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BOLETIN
de la

SOCIEDAD de BIOLOGIA
de

CONCEPCION

BOL. SOC. BIOL. CONCEPCION, TOMO 54, 1983

BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA DE CONCEPCION
ISSN 0037—850X (Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile)

“Publicación biológica periódica, no interrumpida, más antigua de Chile”.
Auspiciada por la Universidad de Concepción.

Director responsable: HUGO I. MOYANO G.
Sub Director: TOMAS CEKALOVIC K.
Representante legal: JORGE N. ARTIGAS C.

Propietario del Boletín: Sociedad de Biología de Concepción.
Domicilio legal: Edificio O. Wilhelm G., Barrio Universitario, Universidad de Concep-
ción. Casilla 2407, Concepción, Chile.

COMITE DE PUBLICACION

ANDRES ANGULO O. JUAN CONCHA B. >
CLODOMIRO MARTICORENA P. VICTOR A. GALLARDO G.

COMITE ASESOR TECNICO

Andrés Angulo O. (U. Concepción) Aldo Meza M. (U. Valparaíso)

Jorge Belmar C. (U. Católica, Stgo.) Mélica Muñoz S. (Mus. Nac. Hist. Nat.)
Eduardo Bustos O. (U. de Chile, Stgo.) Carlos Muñoz A. (U. Chile, Santiago)
Hugo Campos C. (U. Austral, Valdivia) Edgardo Oehrens B. (U. del Comahue,

Juan C. Castilla R. (U. Católica, Stgo.) Argentina)

Guido Cea C. (U. Concepción) Edmundo Pisano V. (Inst. Patagonia,
Luis Corcuera P. (U. de Chile, Stgo.) Punta Arenas)

Osvaldo Cori M. (U. de Chile, Stgo.) Carlos Ramírez G. (U. Austral, Valdivia)
Enrique Contreras M. (U. Concepción) Manuel Rodríguez L. (U. Austral, Valdivia)

Héctor Croxatto R. (U. Católica, Stgo.) Mario Rosenmann A. (U. Chile, Stgo.)
Eduardo del Solar O. (U. Austral, Valdivia) Francisco Saiz G. (U. (Valparaíso)

Gabriela Díaz S. (U. de Chile, Stgo.) Bernabé Santelices G. (U. Católica, Stgo.)
Ramón Formas C. (U. Austral, Valdivia) Roberto P. Schlatter (U. Austral, Valdivia)
Víctor Gallardo G. (U. Concepción) Federico Schlegel S. (U. Austral, Valdivia)
Ernst Hajek G. (U. Católica, Stgo.) Mario Silva O. (U. Concepción)

Arturo Jofré M. (U. Concepción) Haroldo “Toro G. (U. Católica, Valparaíso)

Boris Jorquera M. (U. Austral, Valdivia) Luis Vargas F. (U. Católica, Stgo.)
Manuel Krauskopf R. (U. Austral, Valdivia) Juan Vial C. (U. Católica, Santiago)
Clodomiro Marticorena P. (U. Concepción) Ennio Vivaldi C. (U. Concepción)
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Toda correspondencia y órdenes de suscripciones deben dirigirse a: Sociedad de
Biología de Concepción, Casilla 2407, Concepción.

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BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA

DE CONCEPCION —-CHILE- +

Organo Oficial de las Sociedades de Biología y de
Bioquímica de Concepción

Publicación Auspiciada por la Universidad de Concepción

TOMO 54 AÑO 1983
SUMARIO
Pág.
ARRIZAGA. M. A. Variación estacional en la alimentación de la sardina común
Clupea (Strangomera) bentinckt Norman, 1936 (Pisces, Clupeidae) en la
Recon del” Bio blo, Ulea tenen teatros onto ODIOSO 7
ARTIGAS, J. N. Apoxyria cymbafer n. sp. nueva especie y primer registro del
género para Chile (Diptera, Asilidae, LaphystiiMa€). commonninnononncnrnsicaneaoos: 27
CEl, J. M. y J. C. ORTIZ. Descripción de una nueva especie de lagarto Liolaemus
coeruleus mn. sp. para Argentina. (Sauria, Iguanidae). eommcinicinnnnnnonrnnonenenronos 35
CEKALOVIC, T. Catálogo de los Escorpiones de Chile (Chelicerata, Scorpiones). 43
CEKALOVIC, T. y M. CASTRO. Chiasognathus granti Stephens, 1831 (Coleoptera
Lucanidae), descripción de la larva y nuevas localidades para la especie. 70
GARRIDO, N. Las Boletáceas en plantaciones de Pinus radiata D. Don en Chile.
(Eng PBasidlony Ecler oe ca anenao doce neto odo nciaD de ooon dal ssi aio St rca SsRNii ida 17
GARRIDO, N., C. MARTICORENA and E. OEHRENS. Ecological aspects and
crop of Suilus Luteus (Fungi: Boletaceae) in Pinus radiata forests in Región
del. Bros Bios Chile reia ai USER 89
HERMOSILLA, I., A. URBINA y J. C. CABRERA. Espermatogénesis en la rana
chilena Caudiverbera caudiverbera (Linné, 1758) (Anura, Leptodactylidae). 103
ITURRIAGA, R., H. CARDENAS y L. QUEVEDO. Cambios de excitabilidad
Muscular en ratas sometidas a shock por torniquete. eococccnonononcnnnnnacinnsncnonnnos 117
RIVERA, P. Las investigaciones sobre la flora diatomológica marina de Chile:
antecedentes históricos, estado actual y problemas relacionados con la
E Eo DATE O opoOOS PEEcecnOS 125

WERLINGER, C. Gido reproductivo anual y algunas consideraciones sobre la
histología del aparato reproductor de Patiria chilensis (Lútken, 1859)
(A

NOTAS

OYARZO, R., H. y V. H. RUIZ. Charadrius collaris Vieillot, 1918, inverna en la
Bahía de Concepción. (Aves, Charadriidae). eommocionnnnncncarencncenconnnanencnnanenasancnnors

PRADO, R. Nota sobre cefalópodos decápodos recolectados alrededor de las islas
de Pascua y Sala y GÓMEZ. coconinccncncnnnnonnonennnennnnncncononnncanananononnonon encarar aran ra sanan narannaos

ROA, G. y M. A. RETAMAL,. Nuevo registro de Hepatus chiliensis H. Milne-
Edwards, 1837 en Chile (Crustacea, Decapoda). eoococaconoconnnnsornsncnoncacnonioncorenoss

UGARTE, E. y J. ARRIAGADA. Presencia de Arachnitis uniflora Phil. (Cor-
siaceae) en la Península de Hualpén, Concepción, Chile. mocoinooncanorarornessos

VASQUEZ, J. A. Pyura chilensis Molina, 1782 en el norte del Perú. (Ascidiacea,
Pyuridae). —emmorcccnoncanenonnnoncncncononcnrnnenen en cn cn cnnenennnnnnan carr nnnanannr nan anar anar an caen ran an ano rnnanen canes:

135

153

159

163

167

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 7-26, 1983. 7

VARIACION ESTACIONAL EN LA ALIMENTACION DE LA

SARDINA COMUN GCLUPEA (STRANGOMERA) BENTINCKI,

NORMAN 1936, (PISCES, CLUPEIDAE) EN LA REGION DEL
BIO-BIO, CHILE

Seasonal food variation of the common sardine Clupea (Strangomera) ben-
tincki, Norman 1936 (Pisces Clupeidae) in the Bio-Bío Región, Chile

ALBERTO ARRIZAGA MIRANDA*

RESUMEN

Se hace un estudio de las variaciones estacionales de la alimentación de la
“sardina común”, Clupea (Strangomera) bentincki, Norman 1936, en las aguas del
litoral de la Región del Bío - Bío (Chile), sobre la base del análisis de 3.380 estómagos
colectados durante los años 1974, 1975 y 1976.

El mayor aporte a la dieta, en las diferentes estaciones la realizaron elementos
del fitoplancton (diatomeas y dinoflagelados), destacándose diatomeas de los géneros
Skeletonema, Rhizosolenia, Navicula, Coscinodiscus y Biddulphia, las cuales hicieron
un aporte anual promedio de un 72,66%.

Las diferencias alimentarias interestacionales no son significativas. Asimismo,
este pez tendría un grado de preferencia en la elección de las presas. Esta especie,
presenta un doble comportamiento alimentario. En la edad juvenil, encontramos una
dieta mixta (compuesta por representantes del fitoplancton y zooplancton), en cambio,
en los adultos, es estrictamente fitoplanctófaga. La modificación del comportamiento
se produce en una talla alrededor de los 80 mm de longitud.

ABSTRACT

Seasonal variations of food in the “common sardine”, Clupea (Strangomera)
bentincki, Norman 1936, in the coastal waters of the Bio-Bio Region (Chile) are
reported.

Through the different seasons, most of the diet is composed by phytoplankters
(Diatoms and Dinoflagellates). Among them, the Diatom genera Skeletonema, Rhizoso-
lenia, Navicula, Coscinodiscus y Biddulphia, reached an average of 72.66 per cent of
the diet in the studied period.

The differences in the composition of food between seasons were not signi-
ficant, and the fish also shows some degree of preference in choosing its preys.

*Depto. Biología y Tecnología del Mar, Pontificia Universidad Católica de Chile, Sede Talcahuano.
Financiado por la División de Investigación de la Pontificia Universidad Católica de Chile, Proyecto
19/78.

8 3 -+ Bol. Soc.: Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

The species shows two different feeding patterns. As a juvenile, it is found
a mixed diet (composed of both phyto- and zooplankters), on the other hands, as adults
the species behave as a strictic phytoplanktophagous. Switching in feeding behaviour
seems to take place when fishes reach 80 mm total length.

Keywords: Clupeidae. Ecology. Food chains. Southeastern Pacific.

INTRODUCCION

Forbes (1914) y Hartley (1948), indican que los peces de una
determinada población tienen preferencias por cierto tipo de presas, pu-
diendo desarrollar un alto grado de especialización en su comportamiento
frente a la dieta.

Por otra parte, la intensidad de predación, no está en relación
directa con la disponibilidad del alimento, sino que está ligada directa-
mente con las características físicas de éste (Allen, 1941; Grimas, 1963;
Ivlev, 1961; Ware, 1972). Además, el consumo de alimentos en el caso de
una ingestión indiscriminada, debería ser constante, pero Holing (1966)
y Rasheusky (1959), estiman que la intensidad en el consumo tiende a
alcanzar una asintota, cuando el volumen gástrico se hace máximo. Es
interesante indicar que, la distribución espacial que tienen las presas po-
tenciales, es importante, ya que muchas veces la forma de agregación y
exposición que ellas presentan, hace que aumente o disminuya la eficiencia
de depredación de las mismas (Johanes y Larkink, 1961; Schutz, 1969).

Los factores físicos del medio, también influyen en la eficiencia
dela depredación. Paulov (1960) y Brawn (1969), indican que el ángulo
de incidencia de la luz tiene importancia en las capturas de algunos tipos
de presas. |

- El estado de nutrición del depredador, tiene importancia en la
eficiencia de la explotación del recurso alimento (Teitelbaum, 1966).

' En el caso de peces filtradores el número de las branquiespinas
tiene una relación directa con la eficiencia y selección de los organismos
filtrados (King y Macleod, 1976).

La sardina Clupea (Strangomera) bentincki, Norman 1936, ocupa
un lugar preponderante en la trama trófica del sistema pelágico del Pací-
fico Sur—oriental, frente a Chile central (Arrizaga, 1981).

“El conocimiento actual de los hábitos alimenticios de los repre-
sentantes de los clupeiformes, en aguas del Pacífico Sur—oriental, es escaso.
Sin embargo, es necesario indicar que a nivel mundial la literatura tam-
poco es abundante.

- Las observaciones realizadas en Chile por Schneider (1943), Mann
(1954) y De Buen (1958), son estudios generales de la dieta de esta especie
y:de la anchoveta Engraulis ringens.

Sin duda, son Rojas de Mendiola et al. (1969), los autores que
desarrollan para la anchoveta, Engraulis ringens, el primer aporte de en-
vergadura en el estudio de la composición de la dieta de una especie del
gfúpo de los Clupeidae en el Pacífico Sur—oriental.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1988. 9

Los primeros aportes en relación con la alimentación de la es-
pecie en estudio, fueron hechos por Arrizaga e Inostroza (1979), que en-
tregan antecedentes generales del espectro trófico, y Balbontín et al. (1979)
los cuales informan de la alimentación de formas juveniles en cautiverio.

El propósito de este trabajo es entregar datos acerca de la varia-
ción trófica estacional de la sardina común, con un análisis del grado de
asociación del contenido gastro-intestinal en las distintas estaciones del
año.

MATERIALES Y METODOS

Los ejemplares de Clupea (Strangomera) bentincki, se colectaron
en el área de operación de la flota comercial de cerco de Talcahuano,
entre los años 1974 a 1976, ambos inclusive (Figs. 1 y 2).

”

Figura 1.- Localización del área de trabajo.

10 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

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Figura 2.- Zonas de pesca para cada estación del año.

Mensualmente se coleccionó un número variable de estómagos
(Tabla ID), procesándose un total de 3.380 contenidos gastrointestinales,
cada uno de los cuales se procedió a guardar en un frasco que contenía
formol neutralizado al 7% (Savaje, 1937).

Cada uno de los estómagos colectados fue analizado de la siguiente
manera:

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 11

ANETO OT

Número de estómagos colectados durante el período de muestreo.

1974 | 1975 1976
Enero 80 70 120
Febrero 100 70 70
Marzo 90 90 70
Abril 170 170 150
Mayo 90 150 sM
Junio 190 180 70
Julio 80 190 100
Agosto 140 90 SM
Septiembre 70 120 70
Octubre sM 110 80
Noviembre 140 100 90
Diciembre 70 SM SM
TOTAL 1.220 1.340 820

*SM sin muestras

Una vez abierto el tracto digestivo, se filtró el contenido mediante
un chorro de agua muy fino sobre un tamiz de 50 micras. Cada uno de los
contenidos se llevó a un volumen constante de 10 ml. Para la estimación
de la abundancia de presas, se utilizó el criterio de la gota alícuota (con
un volumen estimado en 0,12 ml.). Procediéndose luego, a determinar
los taxa y la frecuencia de aparición de cada uno de ellos, expresándose
en frecuencias porcentuales (Tabla ID). En cada uno de los estómagos se
realizó tres determinaciones, los resultados se agruparon por estación,
expresándose como valores promedios, para intervalos de 3 centímetros
de longitud de pez. Además, se calculó el porcentaje en que cada uno de
los grandes grupos (e. g. diatomeas, dinoflagelados, zooplancton y ruido),
intervienen en la dieta en cada una de las estaciones (Fig. 3). Para deter-
minar si había un grado de asociación entre los contenidos gastro-intes-
tinales, y estimar de esta manera la existencia de un cierto grado de pre-
ferencia del pez, se aplicó un test de estadística no paramétrica, conocido
como coeficiente de concordancia o estadístico W (Kendall y Babington—
Smith, 1939), para utilizar el test citado, fue necesario asignar rangos a
cada uno de los valores observados en la Tabla 11 y generar de esta manera
la Tabla 11. A fin de poder comparar la significación estadística del
guarismo obtenido, buscamos el valor crítico de significación al nivel del
0,01. Para esto usamos el estadístico propuesto por Friedman (1937).

12 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

RESULTADOS

En la estación estival, las diatomeas fueron las únicas presentes,
Durante esta temporada, el espectro trófico estuvo compuesto por 17 tipos
de presas, siendo las más representativas, ejemplares de especies de los gé-
neros Skeletonema, Rhizosolenia, Melosira, Navicula, Coscinodiscus, Bid-
dulphia. El número varió de 16 en los contenidos gástricos de las tallas
8-10 y 11-13 cm a 12 en los contenidos de las tallas 14-16 cm (Tabla II,
Figs. 3 y 4).

Durante el otoño el espectro trófico, estuvo conformado por dia-
tomeas, dinoflagelados y zooplancton. Al observar la “Tabla II, se puede
ver claramente que en la alimentación de esta temporada, fueron domi-
nantes las diatomeas, destacándose por su presencia, los representantes de
Rhizosolenia, Coscinodisucus, Skeletonema, Actinoptychus, Licmophora
y Eunotia. Entre los dinoflagelados hay que destacar las contribuciones
de Ceratium y Protoperidinium,

En los contenidos tróficos de los estómagos correspondientes a
las tallas de longitud más pequeñas, 5-7 cm, que corresponden a elementos
juveniles (Arrizaga, 1981), se encuentra un porcentaje alto de componentes
del zooplancton.

Además, hay que indicar, que los estómagos provenientes de las
distintas longitudes muestreadas aparecen partículas de materia orgánica
sin identificar, a las que hemos designado con el nombre de ruido (Figs.

NO):

Ea En las tallas 5-7 cm el espectro, está formado por 19 elementos
en las tallas 9-10 y 11-13 cm este estuvo compuesto por 18 y en los estó-
magos correspondientes a las longitudes 14-16 cm se presentaron 12 com-
ponentes.

En la temporada de invierno, en los estómagos provenientes de
las longitudes menores (1. e. 5-7 cm), los copépodos se presentaron como
el alimento preponderante, seguidos de elementos del fitoplancton, entre
los que se destacaron representanes de Skeletonema, Eunotia y Navicula,
y en las longitudes 8-10 y 11-13 cm los principales componentes de la
dieta fueron Skeletonema, Navicula y Coscinodiscus. En un menor por-
centaje aparecieron Licmophora, Nitzchia, Pinnularia, Stephanopyxis y
Thalassiosira. Los dinoflagelados fueron representados por Protoperidi-
nium y Ceratium.

El número de presas varió desde 6 para los estómagos de las tallas
5-7 cm a 17 en las tallas 8-10 cm, 16 en los contenidos gástricos de las
longitudes 11-13 cm y 8 en los contenidos provenientes de las longitudes
14-16 cm. (Tabla II, Figs. 3 y 6).

En primavera el espectro trófico presentó elementos del fito-
plancton (diatomeas y dinoflagelados) y zooplancton.

Entre las diatomeas, aparecieron como más representativas Ske-
letonema, Biddulphia, Coscinodiscus, Navicula y Licmophora. Los dino-
flagelados se presentaron en el espectro trófico, con los géneros Ceratium,
Dinophysis y Protoperidinium. El más abundante de los tres nombrados
fue Ceratium.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 15

Los copépodos se presentaron en forma relativamente abundante
en los estómagos provenientes de tallas menores (5-7 cm). Las partículas
que hemos designado como ruido, presentaron frecuencias de aparición
en todo el rango de longitudes.

El contenido gastrointestinal proveniente de los estómagos de
las tallas 5-7 cm presentaron 7 tipos de presas, 16 fueron halladas en los
de las tallas 8-10 cm. El espectro trófico proveniente de las longitudes
11-13 y 14-16 mostraron 15 y 9 presas respectivamente (Tabla Il, Figs.
IN):

Mediante la aplicación del “coeficiente de concordancia”, se
determinó un alto grado de asociación: (Y = 63; x*.011251 = 4431; P 0,01)
entre las muestras de las distintas estaciones.

Si comparamos la estimación de T, con el valor crítico de chi-
cuadrado a un nivel de significación de un 1%, para (26-1) grados de
libertad, observamos que el valor de tabla de chi-cuadrado es 44,31 (para
el 0.5% de uno menos alfa).

DISCUSION

Como se ha indicado, las investigaciones: relacionadas con la ali-
mentación de Clupeoídeos son escasas. Quizás, la primera de las contri-
buciones en cuanto al comportamiento alimentario, sea la hecha por
Hardy (1924) en las costas de Inglaterra, para Clupea harengus donde
se señala que las preferencias alimentarias de esta especie la componen
elementos constituyentes del zooplancton (copépodos). Posteriormente, -
Hentschel (1950), indicará que en el Mar del Norte, la especie citada
tiene el mismo comportamiento.

En las larvas de sardinas y anchovetas, se han encontrado, funda-
mentalmente, comportamientos zooplanctófagos (Arthur, 1956; Andreu,
1960; De Ciechomski, 1967; Shen, 1969). Estimamos que esta tendencia:
a la zoofagia, en ejemplares larvales y juveniles, se debería a que las estrue-
turas de las branquiespinas hacen físicamente imposible la selección de
partículas de menor tamaño. Por otra parte, es posible que en esta fase.
del desarrollo, estos organismos requieran de una cierta cantidad de in--
gesta proteica, la cual obtendrían del zooplancton.

En muchas especies de este grupo, se produce con la edad, una
modificación en la dieta. En la sardina de Africa del Sur y Namibia,
Sardinops ocellata, King y Macleod (1976), indican que el referido cambio
se produce alrededor de los 100 mm de longitud, pasando de una zoofagia
estricta a una dieta mixta. Al observar la Tabla II, vemos que C. ben-
tincki tiene un cambio de hábito alimentario a los 80 mm de longitud,
pasando de una dieta mixta a una estrictamente fitoplanctófaga. Scofield
(1934), reportó la misma situación en la sardina de California, Sardinops
caerulea, donde el cambio en el comportamiento alimentario se produce
alrededor de los 95 mm de longitud. En aguas del Atlántico, frente a las
costas de Africa austral, King y Macleod (1976), observaron que igual
situación ocurría en la anchoa del Cabo, Engraulis capensis; De Cie-
chomski (1967) indica que la anchoa argentina Engraulis anchoita pre-

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STO NE NAT

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

18 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

TABLA N0 V

Aporte anual (expresado en frecuencia porcentual, ordenado de mayor a menor) de

cada una de las presas encontradas en los estómagos de Clupea (Strangomera) bentincki.

Skeletonema 32,079,
Rhizosolenia 12,359,
Navicula 12,047,
Coscinodiscus 8,609,
Biddulphia 7,62%
Copépodos 5,10%
Ceratium 4,01%
Ruido 3,28%
Melostra 3,17%
Protoperidinium 2,51%
Eunotia LS
Licmophora 2
Coccneis 0,967,
Dinophysis 0,78%
Gomphonema 0,68%,
Nitzschia 0,349,
Chaetoceros 0,30%
Thalassiosira 0,24%
Cerataulina 0,24%
Stephano phyxis 0,189,
Pinnularia : 0,17%
Grammato Phora 0,17%
Actinoptychus 0,08%
Gyrosigma 0,01%,
Rhoicosphenia 0,007%
Thalassiothrix 0,0079,

TOTAL 99.449,

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 19

5-7 em. 8-10 em. 11-13 cm. 4-16 cm.

VERANO

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: . 1: 24857 124: 832
2,92%. 9,99%.
INVIERNO
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TINEO NA TA: 582% YH: 21.08%
1,13% 0,40%

<] PRIMAVERA

1] 938%
A 0,34%
: : 5,80%
LJ DIATOMEAS ZOOPLANCTON
77 TI DINOFLAGELADOS 5) RUIDO

Figura 3.- Frecuencia porcentual de los principales grupos de presas, por grupos de
tallas y estaciones. : |

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.
VERANO

50

TALLAS 8 - 10

50

TALLAS 11 - 13

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TALLAS 1 - 16

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Figura 4. Espectro trófico por grupo de talla (Verano). ;

21

TALLAS

OTOÑO

50

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.
50

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14 - 16

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Figura 5.- Espectro trófico por grupo de talla (Otoño).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

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INVIERNO

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Figura 6.- Espectro trófico por grupo de talla (Invierno).

23

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

PRIMAVERA

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Figura 7.- Espectro trófico por grupo de talla (Primavera).

24 Bol.: Soc. Biol: Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

senta también un cambio de dieta, pasando de una zoofagia casi estricta
a una fitofagia absoluta, ocurriendo esto cuando los individuos alcanzan
los 90 mm de longitud.

Los clupeoídeos de aguas del Océano Indico, frente a las costas
de India, presentan un comportamiento algo diferente del indicado ante-
riormente. Vijayaraghaven (1953) y Bainbridge (1963), indican que varias
especies del género Sardinella, tendrian preferencias por el zooplancton.
Nair (1960) indica que la sardina de aceite de la India, Sardinella lon-
giceps, en la edad adulta, tiene una preferencia estricta por los elementos
del fitoplancton; teniendo como elementos más destacados en su dieta
a representantes del género Fragilaria.

En la anchoveta Engraulis ringens, la alimentación de los adultos
en sectores de la costa morte del Perú, se basa, fundamentalmente en
“elementos del fitoplanctón, pero no así en el sur, donde presenta un
espectro trófico mixto (Rojas de Mendiola et al. 1969). Kubo (1961, fide
Hayasi, 1967), por otra parte, indica que la alimentación de la anchoa
del Japón, Engraulis japonicus, está basada esencialmente en elementos
del fitoplancton. Lo mismo indica Bayliff (1963) para Centengrulis mys-
ticetus, en la zona del Golfo de Panamá.

Durante todas las estaciones del año, la especie en estudio, mos-
tró una clara tendencia por la fitofagia, excepto en los individuos me-
nores de 80 mm, en los que se encontró elementos del zooplancton (co-
pépodos). Tabla II. il

El período en que se observó una fitofagia estricta, fue la tem-
porada estival, seguramente porque las muestras no presentaron ejem-
plares juveniles (Tabla IV).

| Los valores obtenidos de la aplicación del estadístico W, nos
permiten afirmar la existencia de un grado de concordancia significativa
en el patrón de preferencia, en las distintas estaciones del año. Esto
significaría que, Clupea (Strangomera) bentincki seleccionaría las especies
que componen su dieta, considerando que todos los elementos del planc-
ton, estarían expuestos a iguales preferencias y el tratamiento estadística,
tendría efectos idénticos, Arrizaga (1981).

CONCLUSIONES

1.- La especie Clupea (Strangomera) bentincki, en el litoral de la Región
del Bío-Bío, tiene un doble comportamiento alimentario. En la
edad juvenil, presenta una dieta mixta, compuesta por elementos del
zooplancton y fitoplancton; en cambio, los adultos presentan una

TT dieta estrictamente fitoplanctófaga.

2.- El cambio de o ocurre alrededor del año de pida (80 mm
de longitud).

3.- El mayor aporte a la dieta de esta especie en las diferentes estaciones
del año, lo hacen las diatomeas, siendo representante de los géneros
Skeletonema, Rhizosolenia, Navicula, Coscinodiscus y Biddulphia, los
que aparecieron en mayor frecuencia porcentual, llegando ésta al
72,66%, (Tablas II y V). als oe

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. .25

4.-. La ordenación de mayor a menor frecuencia de aparición de los tipos
de presas en las distintas estaciones del año, muestra que las diferen-
cias interestacionales no son significativas, sobre todo, para los géneros
de mayor importancia trófica (Tabla IV), manteniéndose esta ten-

dencia para el espectro anual (Tabla V).

5.- El resultado del cálculo del estadístico W de Kendall, indicaría la
existencia de un grado de concordancia significativa, en el orden en
- que aparecieron las presas en las diferentes estaciones; indicando ésto
tal vez un grado de preferencia alimentaria de Clupea ( Strangomera)
bentinck:.

BIBLIOGRAFIA

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 27 - 33, 1983. 27

APOXYRIA CYMBAFER N. SP., NUEVA ESPECIE Y PRIMER
REGISTRO DEL GENERO PARA CHILE
(DIPTERA, ASILIDAE, LAPHYSTIINAE)

Apoxyria cymbafer n. sp., new species and first record of the genus to Chile
(Diptera, Asilidae, Laphystiinae).

JORGE N. ARTIGAS*

RESUMEN
Se describe una nueva especie de Laphystiinae (Diptera, Asilidae), APoxyria
cymbafer n. sp., de Chile. Es el primer registro del género para Chile y el segundo
de Laphystiinae. Se discuten semejanzas morfológicas entre los género APoxyria Schiner
y Hexameritia Speiser, y se hacen comentarios sobre opiniones de otros autores refe-
rente a sinonimias y estructuras morfológicas de los géneros.

ABSTRACT
A new species of Laphystiinae (Diptera, Asilidae), APpoxyria cymbafer from
Chile, is described. It is the first record of the genus in Chile and the second of La-
phystiinae. Morphological similarity between genera APoxyria Schiner and Hexame-
ritia Speiser, are discused. Comments upon authors opinions concerning synonimy
and morphological structures are made.

Keywords: Diptera. Asilidae. APoxyria. Taxonomy. Neotropical Region. Chile.

INTRODUCCION

Martin, Ch. H. y N. Papavero 1970: 35b.9 y 35b.10, diferencian
Apoxyria Schiner, 1866 y Helolaphyctis Hermann, 1920, como dos buenos
géneros. Hull, F. M., 1962:81 y 101, reconoce ambos géneros como válidos
e ilustra en 13 figuras, estructuras de varias especies, las cuales muestran
diferencias de nivel genérico, que parecen menores o irrelevantes. En la
Fig. 1563, muestra un fémur y tibia posteriores de Apoxyria apicata Schi-
ner, visiblemente curvados, carácter que no posee la nueva especie descrita

*Departamento de Zoología. Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de Con-

cepción, Casilla 2407. Concepción, Chile.

28 : Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

en este trabajo. En la Fig. 1676 muestra la genitalia del macho de Helo-
laphyctis chrysorhoea Hull en vista lateral, destacando el particular de-
sarrollo del epandrio en forma de bote, de ubicación ventral, y el de los
elobosos gonopodos terminados en largos dististilos, como en la nueva
especie APoxyria cymbafer n. sp.

Papavero, 1973:244, sinon:miza los géneros Apoxirya Schiner,
1866 y Helolaphyctis Hermann, 1920; valida Apoxtrya por prioridad. De
esta forma, el género queda compuesto por las siguientes especies:
Apoxyria apicata Schiner, 1866:382, posible de Brasil (tipo del género).
APoxyria americana Carrera, 1955:109, de Brasil.

Apoxyria modesta (Hermann) 1920:194, nomen nudum, de Argentina.
Apoxyria chrysorheus (Hull) 1958:97, de Brasil.

Apoxyria nitida (Hull) 1958:162, de Brasil.

Apoxyria cymbafer n. sp., de Chile.

| Se conocían sólo especies de Brasil. La especie argentina no fue
descrita. En Chile ha sido registrado para la subfamilia Laphystiinae
(status novo Papavero, 1973: 243), sólo el género monoespecífico Hexame-
ritia Speiser, con la especie micans (Philippi) 1865:690. No hay registros
de Hexameritia fuera de Chile.

La presencia de Apoxyria en Chile, a través de la nueva especie
que se describe, es interesante. Además de la similitud morfológica general
con Hexamerttia micans (Ph.), ambas comparten la misma patria típica:
Santiago de Chile.

APoxyria cymbafer n. sp.

Holotypus: 3 El Portezuelo, Colina, Santiago (Chile) 1” 15-X1-1978. Coll.
L. E. Peña. Depositado en el MZUC.

Diagnosis: Pelos del vértex, frente, cara y mistax amarillos, barba blanca

corta. Notum con pelos cortos dorados; escutelo negro brillante
con 4 cerdas marginales negras. Abdomen negro con pelos cortos, negros,
algunos blancos en los costados. Genitalia del macho negra brillante, gran-
de, epandrio tan largo como la tibia posterior, en forma de barca y ubicado
ventralmente.

Descripción del Holotypus: 3Frente y cara con micropubescencia gris,

raleada pelos frontales, ocelares y post oculares, amarillos; giba
facial con densa pubescencia dorada; místax amarillo, abundante, distri-
buido sobre toda la giba facial (Fig. 4); proboscis y palpos negros con
pelos finos, largos y blancos; en la base de la proboscis y en el borde ocular
inferior, el pelo blanco es denso, conformando una barba corta que desde
una vista frontal se distingue divergente hacia los costados a partir del
centro (Fig. 3). Antenas negras, primer segmento con pelos blancos, más
largos en la parte ventral, los del segundo segmento som más cortos y
negros; tercer segmento ovalado, agudo, tan largo como los dos anteriores
juntos, en el ápice tiene una excavación abierta hacia arriba con una
pequeña espina en el centro. Protórax negro, con pelos finos, amarillo
dorado; escutelo negro brillante, con pelos escasos, raleados, finos, 'ama-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 29"

rillos, en el borde con cuatro gruesas cerdas escutelares negras. Meso-
pleura brillante, negro-azulado, con tres franjas de densa micropubes-
cencia plateada, que parten de las coxas y continúan hasta el borde del
mesonotum, la correspondiente al segundo par de patas, es la más notable,
se dobla en ángulo recto hacia adelante en el borde del mesonotum,
conectándose con la franja anterior; pelos de la mesopleura finos, ama-
rillos; mesepimeron con 7 pelos blancos, largos, alineados, fuertemente
curvados hacia arriba en el tercio apical; halteres amarillo pálido; costados
del postmesonotum cubiertos de densa micropubescencia plateada. Alas
hialimas, nervadura marrón oscura. Coxas cubiertas de micropubescencia
plateada, con escasos pelos y cerdas amarillo claro; fémures marrón oscuro,
la mayor parte cubiertos de finos pelos cortos, blancos, deprimidos; parte
ventral de los fémures con pelos finos y largos, más largos en los fémures
medianos; tibias marrón oscuro, más claras en el dorso y base, cubiertas
de pelos como los fémures, pero más densos, las posteriores con pelos
más abundantes en la mitad apical de la parte ventral; todas las cerdas
tibiales amarillo claro; tarsos marrón—rojizo, con cerdas negras en el dorso
y amarillas en los costados. Abdomen marrón oscuro, dorso cubierto
de pelos cortos negros; en los costados del primer tergito y en una zona
triangular en el ángulo latero posterior de los tergitos siguientes, el pelo
es blanco; esternitos brillantes, pelo escaso, casi glabros. Segmentos octavo
y noveno (Hyp) pequeños, ocultos bajo el tergito séptimo (Fig. 6). Geni-
talia grande, marrón oscuro, brillante, girada en 180% y desviada del eje
central; epandrio (Ep) globoso en forma de barca, prolongado por las
placas subanales (Psa); gonopodos (Gp) con basistilo (bas) globoso, distis-
tilo (dis) largo y agudo; surstilo (sur) delgado, recurvado, su ápice emerge
entre los claspers (cl) (Fig. 5 y 6), funda del pene (pe) como se ilustra
en las Figuras 7 y 8.

ÁAllotypus: 2 Similar al macho, difiere en el color del tegumento de los

tergitos, que tienen una mancha amarilla en los ángulos latero—
posteriores de los tergitos 3 al 6; en el tercero es triangular y varía hasta
el sexto donde es una línea. Ovipositor sencillo, termina en punta; el
tergito 9 lleva una corona de 9 cerdas gruesas, negras, dirigidas hacia
atrás, en el esternito 9 hay 12 cerdas negras, dirigidas hacia el ápice.
La espermateca (Fig. 16) es larga, formada por tres tubos iguales, entre-
lazados y enrollados en forma irregular en el tercio apical; ductos expul-
sores (de) un octavo de la longitud de los ductos capsulares (dsc); furca (f)
pequeña, de dos brazos separados, tan largos como los ductos expulsores.
En el interior del abdomen se encontraron 16 huevos (Fig. 11), ligera-
mente ovalados, marrón rojizos, de 0.5 mm de largo por 0.4 mm de

ancho (Fig. 13).

El nombre cymbafer, está relacionado con la forma de barca de
la genitalia del macho. 2

MATERIAL EXAMINADO:

: 1.5 y 12 (1 Sholotypus) El Portezuelo, Colina Santiago. 1” 15-
XI-1978. Coll. L. E. Peña; 4? (1? allotypus) El Portezuelo, Colina, Santiago,
Chile, Nov. 1978. Todos los ejemplares quedan depositados en el Museo
de Zoología de la Universidad de Concepción (MZUGC).

320 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1988.

MEDIDAS DEL HOLOTYPUS:

Largo total 7.2 mm, largo de ala 5.0 mm; ancho de ala 1.8 mm.
ParatyPi de similares medidas.

DISCUSION

La nueva especie de APoxyria y la única especie de Hexamenritia,
son semejantes en su aspecto general y en numerosas estructuras. No
cabe duda que se trata de representantes de géneros de Laphystiinae muy
próximos. Las dos especies de Laphystiimae de Chile, al representar a
sus respectivos géneros, pueden ser separadas de la siguiente manera: en
Hexameritia Speiser (= Eutrichodes Hermann, 1920), el ancho medio
de la cara es igual al ancho mayor del ojo en vista lateral (Figs. 14 y 15);
en Apoxyria, el ancho mayor del ojo en vista lateral, es el doble que el
ancho medio de la cara (Figs. 3 y 4). El tercer segmento antenal de Hexa-
meritia (Fig. 12) es el doble del largo de los segmentos anteriores juntos
y lleva un microsegmento (ms) apical excavado, con una espina en el
centro; en Apoxyria, ambas medidas son similares y no tiene microseg-
mento apical, en el ápice del segmento hay una excavación con una
espina interior (Fig. 4). La genitalia del macho en Hexameritia (ver Ar-
tigas, 1970 Figs. 36-39), es comparativamente más pequeña que en Apo-
xyria, pero presenta igual torción, el tergito 8 es también delgado y el
esternito 8 notablemente más pequeño que el precedente; está hundida
entre los últimos segmentos y totalmente cubierta por el tergito 7. En
Apoxyria la genitalia destaca por su gran tamaño (Fig. 1), especialmente,
por el hipandrio globoso en forma de barca, ubicado ventralmente. La
venación alar en ambos géneros no presenta diferencias. La tibia poste-
rior de Hexameritia micans forma una leve curva, similar a la señalada
por Hull, 1962, Fig. 1563, para Apoxyria apicata Sch., aunque los fémures
difieren; la mueva especie chilena APoxyria cymbafer n. sp. tiene las
tibias posteriores rectas. Los ovipositores de ambas especies son similares;
en Hexameritia siempre está hundido en los últimos segmentos y no pre-
senta cerdas destacadas (Artigas, 1970, Figs. 38, 40 y 41); en Apoxyria
cymbafer n. sp. el extremo queda descubierto desde una vista dorsal y se
destaca una corona de 9-10 cerdas gruesas y negras en el borde del tergito
9 y cerca de 10 cerdas gruesas, más cortas en el borde posterior del ester-
nito 9 (Figs. 9 y 10). Las fundas del pene difieren en ambas especies, para
Hexameritia micans ver Artigas, 1971, Fig. 27; para Apoxyria cymbajfer,
Figs. 7 y 8. Las espermatecas siguen un plan similar en ambas especies:
la furca (endosternum) está formado por dos trozos cortos que pueden
estar unidos formando una U (H. micans, ver Artigas, 1971, Fig. 26) o
separados como en la nueva especie; el extremo de los ductos es sencillo,
en Hexameritia forma en el extremo un espiral ordenado, en APoxyria
las tres terminaciones forman vueltas irregulares, entrelazadas (Fig. 16).

Es interesante el hallazgo de esta nueva especie, proveniente de
una zona tan intensamente colectada como es Santiago. Es posible que
existan otros ejemplares en algunas colecciones que no hayan sido estu-
diadas por el autor (Artigas, 1970:8 y 9).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 31

Fig. 1.- Apoxyria cymbafer n. sp. (holotypus), vista lateral; Fig. 2.- Diagrama de vista
dorsal; Fig. 3.- Cabeza en vista frontal; Fig. 4.- Cabeza en vista lateral; Fig. 5.- Geni-
talia del holotypus, aclarada, en vista lateral, pelos omitidos; Fig. 6.- Genitallia del
holotypus, aclarada, en vista dorsal, pelos omitidos; Al ala; bas basistilo; c cerco; cl clas-
per; dis dististilo; Ep Epandrio; Gp gonopodo; Hyp hipandrio (Stn9); pe pene; sur
surstilo; Stn esternito; Tg tergito. ]

32 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Fig. 7.- Pene en vista lateral; Fig. 8.- Pene en vista dorsal; Fig. 9.- Ovipositor en vista
ventral; Fig..10.-. Ovipositor en vista lateral; Fig. 11.- Vista parcial del abdomen, vista:
ventral, aclarado. se observan los huevos en el interior; Fig. 12.-.Antena de Hexame-
ritia micans (Phil.); Fig. 13.- Perfil de huevo de A. cymbafer n. sv.; Fig. 14.- Diagrama
de cabeza de H. micans en vista frontal, pelos omitidos; Fig. 15.- Diagrama del ojo de.
H. micans, vista lateral; Fig. 16.- Espermoteca de A. cymbafer -n. sp. aclarada en
KOH y montada en bálsamo. 4 ancho de la frente; 4” ancho del ojo; de ductos cap-

sulares; de ductos expulsores; esp espina; f furca; H huevo; ms microsegmento; Stn es-
ternito; Tg tergito.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983. 33

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp: 35-41, 1983. -85

DESCRIPCION DE UNA NUEVA ESPECIE DE LAGARTO
LIOLAEMUS COERULEUS N. SP. PARA ARGENTINA.
(SAURIA, IGUANIDAE)

Description of Liolaemus coeruleus n. sp. a new lizard to Argentina
(Sauria, Iguanidae)

JOSE MIGUEL CEI* y JUAN CARLOS ORTIZ**

ABSTRACT
Liolaemus coeruleus nov. sp. is described from Primeros Pinos, Zapala, Neu-
quén, Argentina. L. coeruleus differs from other members of the genus except L-
lineomaculatus by absence of preanal pores in the males. Comparisons with L. tenuis
are discussed.

La
RESUMEN

Se describe una nueva especie de lagarto para la Argentina. Liolaemus coe-
ruleus proveniente de Primeros Pinos, Zapala, Neuquén, Argentina. Esta especie
difiere de los otros miembros del género Liolaemus, excepto de L. lineomaculatus por
la ausencia de poros anales en los machos. Se discuten comparaciones con L. tenuts.

Keywords: Reptilia. Iguanidae. Liolaemus. Taxonomy. Neotropical Region. Chile.

INTRODUCCION

En la región de Neuquén, Argentina, por las características del
paisaje cordillerano, con pasos de baja altitud entre las laderas atlánticas
y pacíficas, son frecuentes las ingresiones de elementos herpetofaunísticos
chilenos, en particular del bosque temperado. Entre los Liolaemus se
citan, por ejemplo: £. chilensis, L. cyanogaster, L. pictus y una forma ha-
llada por uno de nosotros y preliminarmente considerada como pertene-
ciente al grupo tenuis. Este último Liolaemus fue descubierto siguiendo
la ruta que lleva desde Covunco, cerca de Zapala, Neuquén, hacia la alti-
planicie de Lonco Luán y los lagos Alluminé y Moquehue, ya cerca de
Pino Hachado, en la frontera chilena (Fig. 1). Es una zona de altitudes

*Departamento de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Río Cuarto, Argentina. Dirección actual:
Rancho Somuncurá, Rua Fausto de Figueiredo, Birre 2750, Caiscais, Portugal.
**Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Casilla 2407, Concepción, Chile. 5

36 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

crecientes, entre 1.200 y 1.800 m, con características manchas marginales
de Araucaria araucana, la que después de Primeros Pinos sigue con forma-
ciones más densas hasta después de los límites argentino-chilenos. El am-
biente es relativamente árido, o más bien, de transición con las formaciones
marginales del bosque antartándico de Araucaria y Nothofagus, con pa-
jonales, pedregales abiertos, vegas y mallines. El clima es muy frío en
invierno y con nieve abundante. Durante el verano presenta días de fuerte
calor e intensa radiación solar, pero también días relativamente fríos y
húmedos, con improvisas lloviznas y escarchas, etc., más abundantes en
las zonas ocupadas por las Araucarias y su subbosque de bambusaceas
(Culeus).

Los Liolaemus provisoriamente asignados al grupo tenuis, fueron
colectados en el mes de Enero de 1973 y, posteriormente, en Enero de
1978. La primera vez se observaron poco después de Primeros Pinos, en
la formación marginal de Araucaria, cerca de vegas y mallines, asociándose
con Liolaemus elongatus, L. ceit, un Liolaemus del grupo lineomaculatus
y el anuro Pleurodema bufonina. La segunda vez se encontraron más
arriba, 10 km al oeste de Primeros Pinos, a 1.600-1.700 m, en días de sol,
pero ventosos y frescos. Las laderas con pajonales y llaretas donse se cap-
turaron, esparcidas por pedregal volcánico, eran surcadas por vegas, fre-
cuentadas por Pleurodema bufonima, Alsodes gargola neuquensis, Alsodes
verrucosus, Atelognathus praebasalticus. Entre las duras matas de Stipa
del pajonal están presentes, además de estos Li0laemus, Diplolaemus (af.)
darwini y más raramente D. leopardinus.

A un atento examen, diferencias significativas con las formas hasta
ahora descritas de Liolaemus tenuis, permitieron reconocer la población
neuquina de Primeros Pinos como un taxón .propio, que estimamos como
categoría específica. Objeto de este trabajo, es pues, la descripción de la
nueva especie y su comparación con las otras formas chilenas del grupo.

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Fig. 1.- Localidades donde fueron capturados el holotipo y paratipos de L. coeruleus
están señalados con estrellas.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 37

Liolaemus coeruleus sp. nov.

HOLOTIPO

Un ejemplar macho del Museo Zoológico “La Specola dell'Uni-
versitá di Firense (MZUF) 24251 colectado a 10 km al oeste de Primeros
Pinos a 1.700 m, Zapala, Neuquén, Argentina (38957” Lat. S; 71945” Long.
OPporHy NECE el 2d nero de 1978:

PARATIPOS

MZUF 24241-42 (un macho y una hembra adulta) colectados en
Primeros Pinos a 1.500 m, Zapala, Neuquén, Argentina 38957” Lat. S;
71243” Long. O), por J. M. Cei el 5 de Enero de 1973. MF 24243-24250;
2425224266 (10 machos, 9 hembras, 3 juveniles y 1 infantil) junto con
el holotipo. (Fig. 1).

DIAGNOSIS

Un L£Ltolaemus de tamaño mediano, afin al grupo tenuis, ca-
racteriza por miembros moderadamente largos, escamas dorsales débil-
mente quilladas, no puntudas, dorso café ocre con tonos metálicos hacia
los flancos, vientre azul intenso con fuerte pigmentación melánica com-
pacta, machos sin poros anales.

DESCRIPCION DEL HOLOTIPO

Aspecto general robusto, la extremidad posterior proyectada hacia
adelante no sobrepasa el hombro, la cola no alcanza a ser una y media vez
más larga que la distancia hocico-ano. Cabeza un quinto la longitud ho—
cico-ano, largo de la cabeza 1,2 veces el ancho, escamas de la cabeza de
tamaño mediano y ligeramente convexas. Mental un poco más ancho que
la rostral pero mucho más alto. Dos escamas entre las nasales que están
en contacto con la escama rostral. Aberturas nasales en posición posterior.
Azygo frontal presente, escamas postfrontales más pequeñas que la escama
frontal y que la interparietal, escamas parietales más grandes que la inter-
parietal. Cuatro escamas supraoculares alargadas, escama subocular no
dividida, separada de las supralabiales por una fila de 6 a 9 escamas con-
tabilizadas desde la rostral hasta la última supralabial. Cinco escamas
infralabiales, seis escamas supralabiales. Ancho de la escama mental dos
veces el alto, postmentales en dos corridas divergentes de cuatro escamas
cada una. Escamas temporales lisas, abertura del tímpano oval, sin den-
tillos auriculares, borde anterior con escamas que aumentan gradualmente
de tamaño hacia el ángulo superior, borde posterior con escamas granu-
lares. Cinco escamas entre el borde anterior del oído y la escama superior
que sigue a la subocular. Flecos palpebrales poco desarrollados. Escamas
del lado del cuello granulares, redondas y más pequeñas que las del dorso
del cuello que son imbricadas. Pliegue antehumeral presente. Escamas
dorsales de tamaño moderado, poligonales, subimbricadas, no puntudas
y débilmente quilladas. Escamas ventrales imbricadas, lisas, más grandes
que las dorsales y decreciendo de tamaño hacia la región gular. Escamas

38 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

laterales imbricadas, más pequeñas que las dorsales y que las ventrales,
con una escotadura las escamas medio laterales. Escamas caudales dor-
salmente cuadrangulares, diagonalmente quilladas; ventralmente alargadas,
lisas hacia la base de la cola y débilmente quilladas hacia la porción distal.
Escamas de la cara inferior de los miembros lisas. Escamas de la región
dorsal de los brazos y extremidad posterior débilmente quilladas o nada
quilladas. Borde posterior del muslo granular, sin parche de escamas
agrandadas. La extremidad anterior proyectada hacia atrás alcanza la mitad
del cuerpo. Uñas de todos los dedos agudas. Escamas alrededor del medio
del cuerpo 67, escamas a lo largo del medio del dorso 61, lamelas tetraca-
renadas bajo el cuarto dedo 24, lamelas tetracarenadas bajo el cuarto dedo
de la mano 18. Sin poros anales.

COLORACION EN VIVO

Cabeza y dorso de color café ocre con tonos metálicos que dis-
minuyen hacia los flancos. Borde posterior de las escamas dorsales con
tintes verde. Vientre de azul intenso con fuerte pigmentación melánica
que abarca desde la región gular hasta la cola y cara inferior de las extre-
midades posteriores. Diseño del dorso formado por dos hileras de pequeñas
barras oblicuas café obscuras que no se unen en el medio del dorso. Los

Fig. 2.- Vista dorsal (A) y vista ventral (B) del holotipo de L. coeruleus.

-Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 39

lados del dorso con una hilera de pequeñas barras semejantes a las del
medio del dorso pero transversales. (Fig. 2)

En el animal fijado se pierden las tonalidades metálicas y el
verde del borde posterior de las escamas dorsales. Las pequeñas barras
del diseño dorsal se vuelven de color negro y el azul intenso del vientre
se torna gris. AN

MEDIDAS DEL HOLOTIPO (mm)

Longitud de la cabeza 13,6; ancho de la cabeza 11,1; longitud
hocico-ano 66,4; distancia entre la axila y la ingle 31,3; longitud de la
cola 80,9; longitud extremidad anterior 24,1; longitud extremidad poste-
rior 37,4; longitud del pie 18,8. (*)

VARIACION

En esta especie los machos no presentan poros anales. Los sexos
se distinguen por la forma general del cuerpo que en las hembras es más
delgado y la cabeza menos maciza, la pigmentación melánica del vientre

en las hembras es menos intensa y la base de la cola que es más gruesa y
abultada en los machos.

La variación de las escamas es presentada en la Tabla 1. La colo-
ración y el diseño del dorso son variables,en algunos individuos la barras
laterales transversales son oblicuas, otros presentan en la parte media del
dorso manchas o puntos obscuros. En la cola se puede presentar dos hileras
de manchas que se pueden fusionar en una línea.

DISTRIBUCION
Esta especie es sólo de las localidades del material tipo.

NOTAS ECOLOGICAS :

Liolaemus coeruleus se encuentra en habitats abiertos con for-
maciones herbáceas, pero siempre en proximidad de vegas y mallines. En
el ambiente sobre Primeros Pinos (1.600 — 1.700 m) había matas de gra-
míneas, cojines de Benthamiella, musgos, calceolaria, etc. Esta forma es
poco ágil, corre pesadamente de una mata a otra o escondiéndose bajo
las piedras. No es particularmente agresiva.

ETIMOLOGIA
Esta especie debe su nombre al color celeste de su vientre.

DISCUSION

Liolaemus coeruleus, que inicialmente había sido- relacionado
con £tolaemus tenuis (Duméril et Bibron, 1837) difiere de éste en su mor-
fología general así como en su comportamiento. L. coeruleus es de mayor
talla, más grueso pero de cola más corta. La extremidad posterior proyec-

(1) (Paratipo macho MZUF No 24252) = (Paratipo MZUC N? 7741,, depositado en el Museo de Zoología
de la Universidad de Concepción); Paratipo macho MZUF No 24253, depositado en el Museum National

d' Histoire Naturrelle de Paris.

40 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

DELAS EA Ode

Comparación de algunos caracteres morfométricos y de escamasión de Liolaemus coe-
ruleus y Liolaemus tenuis. Datos representan rango y la media para 12 machos y 10
hembras adultos de cada especie, excepto la longitud de la cola de 6 machos y 3 hembras.

machos hembras machos hembras
Longitud 53,4—69,7 52,4—68,6 51,9—58,3 51,1-58,0
hocico-ano 63,6 60,9 55,41 .54,4
Longitud 10,5—13,8 11,4-13,8 11,9-18,0 11,2-12,6
cabeza 12,5 12,8 12,7 11,8
Ancho cabeza 8,9—11,5 8,8—10,5 9,3—10,8 9,0—10,0
10,6 9,9 9,9 9,3
Longitud extr. 21,6-24,8 19,9—24.,7 21,9-24,3 19,1-22,0
anterior 23,2 22 23,6 21,1
Longitud extr. 31,3-37,9 28,3—35,8 32,7—39,0 32,4—34,7
posterior 34,5 32,6 35,9 33,9
Longitud pie 16,5—18,9 15,7—18,4 18,2—20,1 17,0-18,5
17,8 17,0 19,1 17,9
Longitud axila-ingle 25,9—34,8 27,6-34,7 26,3—30,7 26,0—30,5
31,1 30,6 29,8 29,1
Longitud cola 69,7—81,9 64,8—84,3 90,1—106,8 86,2—93,4.
TU) 72,5 96,7 89,8
Escamas al medio 63—69 65—72 68—74 67—78
del cuerpo 66,2 67,8 70,5 71,9
Escamas a lo largo 60—67 61—66 63-72 64—71
del cuerpo 10430 63,2 67,5 66,5
Escamas dorsales
comprendidas en 16-20 15-18 21-24 20-21
largo de la cabeza DA 16,6 22,5 20,8
Lamelas bajo 40 197 2227 26-32 26-31
dedo pie 24,2 24,4 28,0 28,7

L- coeruleus*

L. tenuis*t*

*Comprende el holotipo y 21 paratipos.
**Incluyen 11 ejemplares sintipos de L. tenuis (Dumeril y Bibron, 1837) del MHNP
y 11 individuos de la colección de diagnóstico J.C. Ortiz (D.J.C.O.).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 41

tada hacia adelante no sobrepasa el hombro como en L. tenuis que puede
llegar hastar el oído. Las escamas dorsales son más grandes y las escamas
caudales distales inferiores son má lisas.

La coloración celeste ventral es característica de L. coeruleus
mientras que en £. tenuis este es blanco grisáceo. Una característica inte-
resante de £. coeruleus es su pigmentación melánica ventral que pareciera
aumentar con la edad. Como nuestra especie vive en un clima frío el cual
se manifiesta aún en días de verano, este melanismo jugaría un rol suple-
mentario de absorción de calor del suelo para alcanzar así, en menos
tiempo, su temperatura de actividad metabólica como lo ha sugerido Do-
noso-Barros (1966) para Liolaemus fitzingerii fitzingerii.

No se observa un dimorfismo sexual de color ni de diseño como
el que existe marcadamente en £. tenuis. La ausencia de poros anales en
machos de L. coeruleus es un fenómeno poco usual en las especies del gé-
nero Liolaemus. Esta situación que recién ha sido reporteada (Cei y Scolaro,
1982), debería ser estudiada en detalle en el futuro.

Esta especie, a diferencia de L. tenuis que es ágil y arborícola,
es más bien lenta y vive en habitats abiertos, escondiéndose bajo piedras.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos al Profesor Benedetto Lanza y a la Dra. Marta Pog-
gesi del Museo Zoológico “La Specola” de la Universidad de Florencia,
por habernos facilitado el material que ha permitido esta descripción.
Al Profesor E. Raoul Brygoo y al Dr. Jean Lescure por la amabilidad de
acogernos en el Laboratorio de Réptiles y Anfibios del Museo Nacional
de Historia Natural de Paris, y por permitirnos revisar material tipo de
sus colecciones, donde se realizó parte de este trabajo.

BIBLIOGRAFIA

Cei, J. M. y A. Scolaro, 1982. A new species of the Patagonian genus Vilcunia with
remarks on its morphology, ecology and distribution. J. Herpetol. 16: 354-363.

Donoso-Barros, R., 1966. Reptiles de Chile. Santiago. Universidad de Cihle. 458 p.
CXLVI pl.

Duméril, A.M.C. y G. Bibron, 1837. Erpétologie générale ou Histoire naturelle des
Reptiles. Paris, Roret, vol. IV, 572 pp.

y Bócaad
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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 43-70, 1983. 43

CATALOGO DE LOS ESCORPIONES DE CHILE
(CHELICERATA, SCORPIONES)

Catalogue of the Chilean Scorpiones (Chelicerata, Scorpiones)

TOMAS CEKALOVIC K.*

RESUMEN
La fauna de escorpiones de Chile está representada por 36 especies distribuidas
en 11 géneros pertenecientes a las familias Bothriuridae, luridae y Buthidae.
El presente catálogo indica: localidad típica, sinonimia, distribución geográ-
fica y la bibliografía pertinente.

ABSTRACT
The Chilean scorpionid fauna is represented by 36 species distributed in 11
genera of the families Bothriuridae, luridae and Buthidae.
The present catalogue includes for each species: typical locality, synonimy,
geographical distribution and bibliography.

Keywords: Chelicerata. Scorpiones. Taxonomy. Chile. Neotropical Region.

INTRODUCCION

Los escorpiones o alacranes en Chile eran conocidos por los
aborígenes, quienes en lengua mapuche los llamaban “tehuanque”, sin
embargo, debemos el primer aporte del conocimiento científico, al ilustre
naturalista Abate Juan Ignacio Molina, que describe en su obra “Com-
pendio de la Historia Geográfica, Natural y Civil del Reino de Chile”
en 1782, al Scorpio chilensis, observado en la estación del estío, bajo pie-
dras del Río Coquimbo. A mediados del siglo pasado entre los años 1830
y 1867, otros investigadores como: F. E. Guerin, P. Gervais y C. L. Koch,
describen nuevas especies para otros países limítrofes, cuyas especies igual-
mente se encuentran presentes en nuestro país. Paul Gervais, en 1849
menciona en la clásica obra de Claudio Gay “Historia Física y Política
de Chile” las siguientes especies:

*Conservador de Museo de Zoología, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Casilla 2407.
Universidad de Concepción. Concepción — Chile. *

44 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54,- 1983.

Scorpio Edwardsiz (Molina), 1782; Scorpw0 Degeeri (Gervais), 1841 y
Scorpio Gervaisit (Guerin), 1830.

Transcurridos algunos años, en la última década del siglo pasado
y a comienzos del presente, varios autores han aportado con nuevos y
esporádicos estudios de la fauna escorpiológica, debemos citar a científicos
como: F. Karch; T. Thorell; E. Simon; E. Lónnberg; R. I. Pocock y K.
Kraepelin, que describen cronológicamente las siguientes especies: Brachis-
tosternus werjemberghi (Thorell), 1877; Phoniocercus pictus Pocock, 1893;
Centromachetes pococki (Kraepelin), 1894; Brachistosternus alienus Loónn-
berg; B. intermedius (Lónnberg), 1902; B. intermedius borelli (Kraepelin),
1910. En el transcurso del mismo período, entre los años 1899 y 1900,
el naturalista Alfredo Borelli realizó algunos trabajos sobre la fauna de
escorpiones de Sudamérica, basado en especímenes recolectados por F.
Silvestri, E. Festa y algún material recibido del Dr. Porter para su iden-
tificación. Con posterioridad al trabajo de Borelli en 1900, transcurrieron
cerca de tres décadas sin que nadie se preocupara por el estudio de estos
interesantes arácnidos de Chile. Recién en 1934, el investigador del Museo
Nacional de Río de Janeiro, prof. Cándido de Mello-Leitao da a conocer
para Chile: Centromachetes obscurus de Valdivia y Bothriurus borellianus
sin indicar localidad precisa, sólo con una escueta etiqueta que dice “Chile”.
-Ginco años más tarde, en 1939, F. Werner publica la descripción de Bo-
thriurus titschaki, basado en material hallado en Contulmo (Cordillera
de Nahuelbuta), la especie de Werner es hoy día Centromachetes tits-
chaki (Werner), 1939. Mello-Leitao en 1941 da a conocer Brachistosternus
castros y en 1945 realiza un importante trabajo monográfico sobre los
“escorpiones Sudamericanos, incluyendo todas las especies conocidas hasta
entonces para nuestro país.

Luego en 1968, San Martín y Cekalovic describen Urophonius
paynensis de la región magallánica, considerándose el “escorpión más
austral del mundo” y redescriben Phoniocercus pictus Pocock, 1893. Ceka-
lovic en el mismo año describe Urophonius sanmartini, nueva especie
que habita hasta la Isla de Chiloé por el sur, el mismo autor continúa
con aportes sobre distribución geográfica, alimentación y habitat
de Phoniocercus y Centromachetes, y otro señalando el descubrimiento
de muevos caracteres morfológicos para el reconocimiento de los machos
en Brachistosternus; en 1973 describe Tehuankea moyano: como un nuevo
género y especie de la Cordillera de Nahuelbuta. Entre los años 1974 a
1981 varios trabajos incrementan el conocimiento de los escorpiones y
“se describen las siguientes especies nuevas: Brachistosternus artigasi Ceka-
lovic, 1974; B. donosoi Cekalovic, 1974; Bothriurus dumay: Cekalovic,
1974; Brachistosternus (LePtosternus) negrei Cekalovic, 1975; Bothriurus
wilhelmi Cekalovic, 1981; Urophonius tumbesis Cekalovic, 1981; y Both-
riurus mochaensis Cekalovic, 1982; por otra parte se cita por primera
vez para Chile a Urophontus corderos Mello-Leitao, 1931, previamente
señalado para Argentina.

El estado actual de la escorpiofauna de Chile reúne a 36 espe-
cies, distribuídas en 11 géneros correspondientes a 3 familias, Bothriuridae,
luridae y Buthidae, esta última representada por la especie cosmopolita
Isometrus maculatus De Geer, conocida únicamente en Chile para. la Isla

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 45

de Pascua. Se entrega a continuación, en orden sistemático, la lista com-.
pleta de las especies con la localidad típica, sinonimia, distribución geo-.
eráfica, coordenadas de las localidades chilenas y la bibliografía corres-:
pondiente.

CLASE ARACHNIDA Lamarck, 1801
ORDEN SCORPIONES Leach, 1815

Familia BOTHRIURIDAE Simon, 1880
Subfamilia BOTHRIURINAE Maury, 1971

Género Bothriurus Peters, 1861
In Monber: Mon., Kón., Preuss., Akad., der Wiss., Berlin, 8: 510.

1.- Bothriurus borellianus Mello-Leitao, 1934.

Bothriurus chilensis (Karsch), Borelli, 1899, 14(336): 6 (In part).

Bothriurus borellianus Mello-Leitao, 1934, 1(51): 88; Mello—Lei-

tao, 1940, 44: 232; Mello-Leitao, 1945, 40: 154; Gajardo, 1959,
15(1): 25-38; Biicherl, 1960, 30: 188-189; Schenone, H. y H. Reyes, 1965,
20(4): 107, Cekalovic, 1966, 10(118): 34.

Localidad típica: CHILE. Sin indicar localidad (Tipo depositado en el
Museu Nacional, Río de Janeiro).

Distribución: CHILE. Antofagasta: Cachinal de la Costa; La Chimba;
Atacama: Lomas de Huasco; Coquimbo: Lomas de Guayacán; Valparaíso:
Casablanca.

2.- Bothriurus burmeisteri Kraepelin, 1894.

Bothriurus burmetsteri Kraepelin, 1894, 11: 227-228, figs. 104,
la 106; Kraepelin, 1889, 8: 196; Borelli, 1901, 16(403): 10; Simon, -
905 TEPISE racpelin 190 Zo o 90 Mello-Leitao, 1934, 8: 92-93,
fig. 26; Mello-Leitao, 1938, 3(9): 92; Mello-Leitao, 1939, 17: 613; Rin-
guelet, 1953, 6(43): 280; Biicherl, 1957, 28: 30-31; Roig, 1973, (4): 196,
200.
Bothriurus (Andibothriurus) burmeisteri Búcherl, San Martín
en al 1060. 302 6 te 0: Erancke) 1974 "alos

Localidad típica: ARGENTINA. Sin indicar localidad (Tipo, no se ob-
tuvo información donde está depositado).

46 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1985.

Distribución: CHILE. Atacama: Totoralillo; Santiago: Santiago (San Ra
món); ARGENTINA. Buenos Aires; La Pampa; Córdoba; “Tucumán;
Mendoza: Laguna Nueva; Camino a San Isidro; Cerro Pelota; Challao;
Dique Papagallos; Cochicó; Quebrada del “Toro; Pareditas; Cacheuta;
Viluco; Los Molles; San Rafael; Yaguarás; Las “Toscas; Valle Hermoso;
San Antonio; Río Negro; Valcheta; Neuquén; Chubut; Colonia Sarmiento;
Esquel; Alto Limay; Puerto Madryn; Caranchos; Gobernador Costa; Como-
doro Rivadavia; Trelew. |

3.- Bothriurus chilensis (Molina), 1782.

Scorpio chilensis Molina, 1782, 4: 215-216.

Scorpio Edwardsti Gervais, 1849, 4: 8; Porter y Edwards, 1897, 1:

12: Borter 1891 11:122MPoxter. 1189141033,

Edwardsii scorpio Pissis, 1875, 301.

CercoPphonius chilensis Karsch, 1879, 3(2): 136.

Bothriurus signatus Pocock, 1893, 12(6): (68): 97.

Bothriurus chilensis Kraepelin, 1894, 11(1): 232-234, lám. 3, figs.

101, 109, 110; Kraepelin, 1899, 8: 197-198, fig. 62; Borelli, 1899,
14(336): 6; Borelli, 1900, 4(5): 62; Borelli, 1901, 16(403): 11-12; Simon,
1904, 73: 120-121; Kraepelin, 1910, 28: 94; Penther, 1913, 27: 252; Porter,
1920, 24(5): 160; Porter, 1930, 34: 162; Mello—Leitao, 1931, 33: 88-89;
Porter, 1932, 36: 55-60; Mello-Leitao, 1932, 34: 20, fig. 6; Werner, 1935,
5(4): 291; Werner, 1939, 5: 358; Roewer, 1943, 26(4): 241; Mello—Leitao,
1945, 40: 157-159; Ringuelet, 1953, 6(43): 280; Búcherl, 1957, 28: 31-32,
fig. 8; Biicherl, 1959, 29: 273; Gajardo, 1959, 15(1): 25-38; Blancas Sánchez,
1959, 1: 24; Búcherl, 1960, 30: 197-198; Cekalovic, 1966, 10(118): 1, 4;
Aguilar y Meneses, 1970, 8(1-2): 3.

Bothriurus (Andibothriurus) chilensis Búcherl, San Martín et al.,
1960, 30: 217-218.

Localidad típica: CHILE. Coquimbo (Tipo extraviado).

Distribución: CHILE. Coquimbo: Coquimbo; Santiago: Santiago; Con-
cepción: Coronel, Concepción; Bío—-Bio: Pemehue; Ñuble: Bulnes; Ma-
lleco: Victoria; Llanquihue: Puerto Montt; ARGENTINA. “Tucumán;
Mendoza; San Juan de Perico; Juncal; Potrerillo; PERU. Abancay;
ECUADOR. Sin indicar localidad; BRASIL. Río Grande do Sul (There-
sepolis).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 47

4.- Bothriurus coriaceus Pocock, 1893.

Bothriurus coriaceus Pocock, 1893, 12(6): 95, plate. 0) e. 12;

Pocock, 1900, p. 357; Borelli, 1901, 16(403): 11; Kraepelin, 1910,
28: 94-95; Mello-Leitao, 1932, 33: 89; Mello-Leitao, 1934, 1(51): 91;
Pessoa, 1935, 29: 436; Mello-Leitao, 1938, 3(9): 84; Mello-Leitao, 1939,
17, 613; Mello-Leitao, 1945, 40: 159, fig. 51; Bicherl, 1957, 28: 20-32,
fig. 10; Búcherl, San Martín et al., 1960, 30: 218, fig. 2; Cekalovic, 1966,
10(118): 4.

Bothriurus coriaceus rochai Búcherl, 1957, 28: 11-17; Biicherl,
1959, 29: 273:

Localidad típica: CHILE. Coquimbo: Coquimbo (Tipo, presumiblemente
en el British Museum of Natural History).

Distribución: CHILE. Coquimbo: Coquimbo; Bosque de Fray Jorge (Alto
de Talinay); Aconcagua; Punta Molles; Valparaíso: Valparaíso, Casablanca;
ARGENTINA. Córdoba: Punta de las Vacas; BRASIL. Mato Grosso.

5.- Bothriurus keyserlingi Pocock, 1893.

Bothriurus keyserlingi Pocock, 1893, 12(6): 96, pl. 5, figs. 9-9a;
Mello—Leitao, 1931, 33: 89; Mello—Leitao, 1934, 1(51): 88; Mello--.
Leitao, 1935, 39: 92, fig. 12; Mello-Leitao, 1939, 17: 613; Mello—Leitao,
1945, 40: 174-175; Búcherl, 1957, 28: 19, 44, fig. 9; Biicherl, 1960, 30: 187,
206; Cekalovic, 1966, 10(118): 4; Aguilar y Meneses, 1970, 8(1-2): 2.
Bothriurus vittatus keyserlingi Kraepelin, 1894, 11: 232; Krae-
peliny 1899/18: 1975 Penther, 191327: 251

Localidad típica: CHILE o PERU (Tipo extraviado).

Distribución: CHILE. Coquimbo; PERU. Sin indicar localidad; ARGEN-
TINA. Salta; Buenos Aires; Neuquén (Catanlil); BRASIL. Río do Sul.

6.- Bothriurus mochaensis Cekalovic, 1982.

- Bothriurus mochaensis Cekalovic, 1982, 53: 42-45.

Localidad típica: CHILE. Arauco: Isla Mocha (Holotipo depositado en el
Museo de Zoología de la Universidad de Concepción, MZUC).

Distribución: CHILE. Arauco: Isla Mocha.

484, Bol.--Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

7.- Bothriurus vittatus (Guerin), 1830.

Buthus vittatus Guerin, 1830, 2: 50.

Brotheas angustus C. L. Koch, 1839, 8: 89.

Brotheas bonariensis C. L. Koch, 1842, 10: 12.

Brotheas nigrocinctus C. L. Koch, 1842.

Brotheas erythrodactylus C. L. Koch, 1842, 10: 16.

Scorpio gervaisi Guerin—Meneville, 1843, Icon. Reg. p. lp; Ger-

vais, 1849, 4: 8.

Bothriurus vittatus Thorell, 1876, 19: 168-170; Holmberg, 1881,

: l: 164; Kraepelin, 1894, 11: 228-232, lám. 2, fig. 108; Kraepelin,

1899, 8: 196-197; Borelli, 1899, 14(336): 5-6; Borelli, 1901, 16(403): 11;
Lonnbera 11902 12902565 Simon19081p. 418: Simon; 19044435 1215 Ben-
ther, 19202: Bampe 19184708205 Ba wlowsky, 1918, 24: 192216
Porter, 1930, 34: :277; Mello=Leitao, 1931, 33: 92; Werner, 1935, 5(4):
291; Roewer, 1943, 26(4): 241; Mello-Leitao, 1945, 40: 191; Gajardo,
1959, 15(1): 25-38; Cekalovic, 1966, 10(118): 1, 4; Aguilar y Meneses,
1970, 8(1-2): 3.

Bothriurus asper Pocock, 1893, 12(6): 96.

Heterochactas gervaisi Pocock, 1893, 12(6): 82-83; Borelli, 1899,

14(345): 16-18.

Bothriurus Rkarschi Mello—Leitao, 1934, 8: 88.

Bothriurus asymetricus Pessoa, 1935, 29: 434-436, figs. 9-13.

Localidad típica: CHILE. Concepción: Penco (Tipo, no se obtuvo infor-
mación donde se encuentra depositado, presumiblemente extraviado).

Distribución. CHILE. Coquimbo: Coquimbo; Santiago: Santiago; Valpa-

raiso: Valparaiso, Viña del Mar; Concepción: Concepción, Penco; Malleco:
Curacautin; ARGENTINA. Buenos Aires; PERU. Acolla.

8.- Bothriurus wilhelmi Cekalovic, 1976.

Bothriurus wilhelmi Cekalovic, 1976, 50: 175-179; figs. 1-11;
Cekalovic y Artigas, 1981, 51(2): 81.

Localidad típica: CHILE. Concepción: Huálpén (Holotipo depositado
en el Museo de Zoología de la Universidad de Concepción, MZUC).

Distribución: CHILE. Concepción: Hualpén.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 49

Género Centromachetes Lónnberg, 1897
Ent. Tidskr., 18: 200

9.- Centromachetes obscurus Mello-Leitao, 1932.

Centromachetes obscurus Mello-Leitao, 1932, 34: 16-17, fig. 3;
Mello—Leitao, 1945, 40: 204; Cekalovic, 1966, 10(118): 4-5; Mau-
TS LAOS)

Localidad típica: CHILE. Valdivia: Valdivia (Tipo, depositado en la co-
lección del Prof. Cezar Pinto, Instituto Oswaldo Cruz).

Distribución: CHILE. Valdivia: Valdivia.

10.- Centromachetes pococki (Kraepelin), 1894.

Centromachus Pococki Kraepelin, 1894, 11: 238-239, pl. 3, fig.

99.

oa IE e pococki Lónnberg, 1897, 18: 200; Kraepelin,

1899, 199; Borelli, 1900, 4: 64; Mello—Leitao, 1931, 33: 105;
Mello—Leitao, 180. 34: 35; Werner, 1935, pi 8, 291; Mello—Leitao, 1945,
40: 205-206; Cekalovic, 1966, 10(118): 5; Cekalovic, 1968, 40: 27-31;
Cekalovic, 1969, 41: 209-210; San Martín y Cekalovic, 1972, 44: 60; Maury,
1973, 19(59): 111; Cekalovic, 1976, 50: 174-175; Lourenco, W. R. et De:
Keyser, 1976, E 167.

Localidad típica: CHILE. Arauco: 1

Distribución: CHILE. Valparaíso: Valparaíso; Ñuble: Bulnes; Concep-
ción: Tomé, Pinares; Arauco: Curanilahue, Lebu, Los Alamos; Cautín:
Río Trancura.

11.- Centromachetes tischaki (Werner), 1939.

Bothriurus titschaki Werner, 1939, 5: 358; Mello—Leitao, 1945,
40: 191; Búcherl, San Martín et al., 1960, 30: 207-226; Cekalovic,
1966, 10(118): 4; Francke, 1974, 1: 215, 218-219.

Centromachetes titschaki Maury, 1973, 19(59): 111; Francke,
1974, 1: 220.

Localidad típica: CHILE. Arauco: Contulmo y Concepción: Coronel (Tipo
depositado en el Museo de Hamburgo).

Distribución: CHILE. Concepción: Coronel; Arauco: Contulmo; Malleco:
Vega Blanca.

50 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Género Orobothriurus Maury, 1975
Rev. Per. Ent. 18(1): 14-16.

12.- Orobothriurus alticola (Pocock), 1900.

Bothriurus alticola Pocock, 1900: 357-358, fig. 1; Kraepelin, 1911,

-: 28(2): 97; Mello—Leitao, 1945, 40: 144-145; Bicherl, 1957, 28:

19, 23-24, fig. 4; Búcherl, San Martín et al., 1960, 30: 217, fig. 8; Ceka-
lovic, 1966, 10(118): 3.

Orobothriurus alticola Maury, 1975, 18(1): 17-18, lám. 1, figs. 1-10.

Puente del Inca, Nordeste de San Juan, Chilecito y Famatina

(La Rioja), El Manchado (Catamarca), Cumbres Calchaquies y Ollada del
Aconquija (Tucumán).

Localidad típica: CHILE. Santiago: Paso del Inca, 2.945 m. (Tipo depo-
sitado en el British Museum of Natural History).

Distribución: CHILE. Santiago: Paso del Inca; ARGENTINA. Mendoza.

13.- Orobothriurus dumayi (Cekalovic), 1974.

Bothriurus dumayi Cekalovic, 1974, 48: 210-212, figs. 1-10; Ce-

kalovic y Artigas, 1981, 51(2): 81.

Orobothriurus dumayi Maury, 1975, 18(1): 21, lám. 4, figs. 40-44.
Localidad típica: CHILE. Antofagasta: Agua Perales, Cuesta de Paposo
(Holotipo depositado en el Museo de Zoología de la Universidad de Con-
cepción, MZUC).

Distribución: CHILE. "Tarapacá: Termas de Mamiña; Antofagasta: Cuesta
Paposo (Aguas Perales).

Género Phontocercus Pocock, 1893
Ann. Mag. Nat. Hist. (6), 12: 99.

14.- Phoniocercus pictus Pocock, 1893.

Phoniocercus pictus Pocock, 1893, 12(6): 99-100, pl. 6 A, figs. 13,

13a; Pocock, 1894, 4(27): 362; Kraepelin, 1894, 11: 234-236;
Kraepelin, 1899, 8: 198; Borelli, 1900, 4: 61-66; Penther, 1913, 27: 252;
Lampe, 1918, 70: 203; Mello—Leitao, 1931, 33: 104; Werner, 1935, 5(4): 8:
291; Mello—Leitao, 1941, 45: 136; Mello—Leitao, 1943, 2(3): 130; Roewer,
1943, 26(4): 241; Mello-Leitao, 1945, 40: 201-203; Cekalovic, 1966, 10
(118): 4; San Martín y Cekalovic, 1968, 7: 82-88; Vachon, 1973, 104(140):
937-938; Cekalovic y Artigas, 1981, 51(2): 82.

Localidad típica: ?, posiblemente CHILE, sin indicar localidad (tipo extra-
viado, Neotipo depositado actualmente en el Museo de Zoología de la
Universidad de Concepción, MZUC).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 51

Distribución: CHILE. Concepción: San Vicente, Concepción; Cautín:
Temuco, Villarrica, Lago Caburgua, Molco; Valdivia: Valdivia; Osorno:
Osorno; Llanquihue: Maullín.

15.- Phoniocercus sanmartini Cekalovic, 1968

Phoniocercus sanmartini Cekalovic, 1968, 40: 64-73, figs. 1-16;

Cekalovic, 1969, 41: 89-91; Cekalovic, 1971, 3(7): 19-22; Ceka-
lovic, 1976, 50: 174; Galiano y Maury, 1977, 5(11): 326; Cekalovic y Ar-
tigas, 1981, 51(2): 82.

Localidad típica: CHILE. Valdivia: Lago Calafquén (Holotipo depositado
en el Museo de Zoología de la Universidad de Concepción, MZUC).

Distribución: CHILE. Concepción: Ramuntcho, Ensenada Traiguén, Las
Escaleras (Rocoto), Pinares, Agua de la Gloria (Chaimávida), camino entre
Lirquén a Tomé, Concepción (Barrio Universitario), Parque Botánico
Hualpén; Laraquete, Cerro Caracol; Arauco. Contulmo; Malleco: Río
Blanco; Valdivia: Lago Calafquén, Futrono; Valdivia: Valdivia; Osorno:
Entre Lagos, Cordillera Pucatrihue; Llanquihue: Lago Chapo; Km. 8
Norte de Pargua, Puerto Varas; Chiloé: Dalcahue, Castro.

Género Tehuankea Cekalovic, 1973
Bol. Soc. Biol. de Concepción, 46: 42.

16.- Tehuankea moyano: Cekalovic, 1973.

Tehuankea moyano: Cekalovic, 1973, 46: 42-47, figs. 1-23; Ceka-
lovic y Artigas, 1981, 51(2): 82.

Localidad típica: CHILE. Arauco: Ramadillas (Holotipo depositado en
el Museo de Zoología de la Universidad de Concepción, MZUC).

Distribución: CHILE. Arauco: Ramadillas.

Género Urophonius Pocock, 1893
Ann. Mag. Nat. Hist. (6), 12: 100-101.

17.- Urophonius brachycentrus (Thorell), 1876.

CercoPhonius brachycentrus Thorell, 1876, 19: 180-183; Holm-

berg, 1881, p. 165.

Urophonius brachycentrus Kraepelin, 1894, 11: 221-222; Lónn-

berg, 1898, 2(3): 45-46; Kraepelin, 1889, 8: 194; Borelli, 1901,
16(403): 9; Mello-Campos, 1924, 17(2): 256, 291-292; Mello—Leitao, 1932,
34: 35; Mello-Leitao, 1934, 1(51): 48-51; Mello-Leitao, 1938, 3(9): 94
95; Mello—Leitao, 1939, 17: 612; Mello-—Leitao, 1945, 40: 214-215; Rin-

59 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

guelet, 1953, 6(43): 281; Biicherl, 1959, 29: 272; San Martín, 1965, 25(70):
284; Maury, 1968, 27(75): 407-418; Maury, 1969, -29(78): 131-139; MausY,
1973, 32(85): 367; San Martín y Gambardella, 1974, 47: 107.

Localidad típica: ARGENTINA. San Juan (Tipo, no se obtuvo informa-
ción donde se encuentra depositado).

Distribución: CHILE. Valparaiso: Valparaiso; ARGENTINA. San Juan;
Córdoba; Prov. Buenos Aires; La Pampa; Patagonia, URUGUAY. Re-
sión Oeste; BRASIL. Región Oeste. sE IDAS

18.- Urophontus cordero: Mello—Leitao, 1931.

Urophonius cordero: Mello-Leitao, 1931, 33: 100-102, figs. 4-5;

Mello—Leitao, 1932, 34: 35; Mello—Leitao, 1934, 1(51): 52-53;
Mello—Leitao, 1939, 17: 612; Mello—Leitao, 1945, 40: 215-217; Ringuelet,
1953, 6(43): 279-281; San Martín, 1965, 25(70): 284; Maury, 1973, 32(85):
367; Roig, 1973, 4: 200; Galiano y Maury, 1979, 5(11): 327; Cekalovic,
19810292200) io: 91
Localidad típica: ARGENTINA. Paso de Mendoza( "Tipo depositado en
el Museo de Ciencias Naturales “Bernardino Rivadavia”, Buenos Aires).
Distribución: CHILE. Santiago: El Canelo, Hacienda la Rinconada; Val.
paraíso: Canelillos; Ñuble: San Fabián de Alico; ARGENTINA. Mendoza:
Paso de Mendoza; Buenos Aires: Azul.

19.- Urophonius granulatus Pocock, 1898.

Urophonius granulatus Pocock, 1898, 7(1): 392-394; Kraepelin,

1899, 8: 194-195; Borelli, 1901, 16(403): 9; Mello—Leitao, 1931,
33: 102; Mello-Leitao, 1932, 34: 35; Mello—Leitao, 1934, 1(51): 51-52;
Mello—Leitao, 1938, 3(9): 94-95; Mello-Leitao, 1939, 17: 612; Mello—Lei-
tao, 1945, 40: 217-218; Ringuelet, 1953, 6(43): 281; San Martín, 1965,
25(70): 284; Cekalovic, 1966, 10(118): 5; Maury, 1973, 32(85): 367..
Localidad típica: CHILE. Coquimbo. (Tipo, depositado en el British
Museum of Natural History).
Distribución: CHILE. Coquimbo; Valparaiso: Valparaíso, ARGENTINA.
Buenos Aires; Catamarca; San Juan; Chubut, Santa Cruz; Misioneras
(Patagonia).

20.- Urophonius paynensis San Martín y Cekalovic, 1968.

Urophonius paynensis San Martin y Cekalovic, 1968, 13: 88-90,

láms. 1-3, 1 mapa, 2 fotogr.; Cekalovic y Quezada, 1969, 41: 177;
Maury, 1973, 32(85): 367; Cekalovic, 1974, 48: 310; Galiano y Maury,
1979 15(11)::321; Cekaloyiec y Artigas, 1981, 518): 32.
Localidad típica: CHILE. Magallanes: Cerro Castillo (Holotipo deposi-
tado en el Museo de Zoología de la Universidad de Concepción, MZUC).
Distribución: CHILE. Magallanes: Cerro Castillo; Cerro Guido; Laguna
Amarga; La Península; Laguna Figueroa; Rincón Negro; Lago Nordensk-
jold; Cerro Solitario; Barranca Negra; Salto del Payne; Río Baguales.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chil” Tomo 54, 1983. 53

21.- Urophonius tregualemuensis Cekalovic, 1981.

Urophonius tregualemuensis Cekalovic, 1981, 52: 195-196, figs.
¡Ea

Localidad típica: CHILE. Maule: Tregualemu (Holotipo depositado en
el Museo de Zoología de la Universidad de Concepción, MZUC).

Distribución: CHILE. Maule: Tregualemu.

22.- Urophontus tumbesis Cekalovic, 1981.

Urophonius tumbesis Cekalovic, 1981, 52: 197-199, figs. 5-8, 11.

Localidad típica: CHILE. Concepción: Tumbes (Caleta Leandro) (Holo-
tipo depositado en el Museo de Zoología de la Universidad de Concep-
ción, MZUC).

Distribución: CHILE. Concepción: Península de Tumbes.

Subfamilia BRACHISTOSTERNINAE Maury, 1971.

Género Brachistosternus Pocock, 1894.
Journ., Linn. Soc. 24:403.

23.- Brachistosternus (Brachistosternus) ehrenbergi (Gervais), 1841.

Scorpio ehrenbergi Gervais, 1841, 1: 282-283, pl. 1, figs. 18-22;
Gervais, 1944, 3: 59.
Scorpio glaber Gervais, 1841, 1: 285, pl. 1, figs. 28-32; Gervais,
1844, 3: 59.
- - Telegonus politus Koch, 1867, 17: 234-235.
Mecocentrus ehrenbergi Simon, 1878, 5: 393.
-Brachistosternus ehrenbergi Pocock, 1893, 24: 402-404; Kraepe-
noe TI 21621 am tes 103112; Kraepelin, 1896, 13:
álamo 26b; Ktraepelin. 1899/18: 192: fig. 60; Kraepelin, 1911,
28(2): 86; Mello—Leitao, 1931, 9 o WWentier: IIS AA): 290 tio. 380;
Werner, 1939, 5: 357; Roewer, 1943, 26(4): 240; Mello-—Leitao, 1945, 40:
228-231, figs. 96-97; Donoso, 1948, 76(5): 279-281, fig. 1; Bicherl, 1959,
29: 272; Gajardo, 1959, 15(1): 25-38; Schenone, H. y H. Reyes, 1965, 20(4):
107; Cekalovic, 1966, 10(118): 5-6; Aguilar, 1968, 6(34): 167-171;
Aguilar y Meneses, - 1970, 8(1-2): 2; Cekalovic, 1973, 46: 102; Vachon,
19785 104(140):* 918; Francke, :1977,20(1)>475:

54 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Brachistosternus (Brachistosternus) ehrenbergz Maury, 1973,
3299): 1249 ;

Localidad típica: PERU. Payta y Callao (Tipo, no se obtuvo información
donde se encuentra depositado, presumiblemente extraviado).
Distribución: CHILE. Tarapacá: Arica; Oasis Timar; Antofagasta: La
Chimba; Atacama: Caldera; PERU. Payta; Callao; Lima; Valle de Rimac
(Chiclayo); Carabayllo (Zapán); Villa; “Tumbes; Piura; Lambayeque; La
Libertad; Ancash; Ica; Arequipa; BOLIVIA. Sin indicar localidad.

24.- Brachistosternus (Leptosternus) alienus (Lónnberg), 1898.

Brachiosternus alienus Lónnberg, 1898, 2(3): 46-48.

Brachistosternus alienus Kraepelin, 1910, 28: 86-88; Mello-Lei-

tao, 1931, 33: 94; Mello—Leitao, 1945, 40: 223-225, figs. 92-94;
Ringuelet, 1953, 6(43): 278; Cekalovic, 1966, 10(118): 5; Roig, 1973, 4:
IOZ02:

Brachistosternus intermedius alienus Mello-Leitao, 1938, (9)3:

89-91, figs. 3a, b, c; Mello—Leitao, 1939, 17: 611.

Brachistosternus (Leptosternus) alienus Maury, 1973, 32(85): 249,

Localidad típica: ARGENTINA. Chubut: Puerto Madryn (Tipo, no se
obtuvo información donde se encuentra depositado).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Valparaíso; ARGENTINA. Mendoza:
Laguna Nueva (Sur Ránquil Norte); Ranquil Norte; Pareditas; Chubut;
Puerto Madryn; Trelew.

-25.- Brachistosternus (LePtosternus) artigasi Cekalovic, 1974.

Brachistosternus artigast A usd 47: 248-250, figs. 1-10;
Cekalovic y Artigas, 1981, 51(2):
Localidad típica: CHILE. Coquimbo: La pete (Lomas de Peñuelas).
(Holotipo depositado en el Museo de Zoología de las Universidad de Con-
cepción, MZUC).
Distribución: CHILE. Coquimbo: La Serena (Lomas de Peñuelas).

26.- Brachistosternus (Leptosternus) borell: Kraepelin, 1911.

Brachistosternus intermedius borelli Kraepelin, 1911, 28: 86;

Mello—Leitao, 1934, 1(51): 44; Mello—Leitao, 1939, 17: 611; Me-
llo-Leitao, 1945, 40: 234; Cekalovic, 1966, 10(118); 6; Roig, 1973, 4: 199-
200; Roig y Maury, 1981, 39(97): 1-9.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 55

Brachistosternus (Leptosternus) borelli Maury, 1973, 32(85): 249.
Brachistosternus weijenberghi Borelli, 1901, 16(403): 8 (parte):
Benther OLSiZ Za (parte):

Localidad típica: ARGENTINA. Cacheuta (Holotypus hembra Sc-957,
depositado en Museo ed Instituto di Zoología Sistemática, Turin).

Distribución: CHILE. Sin indicar localidad precisa; ARGENTINA. Men-
doza; Cacheuta; Paso de Agua Negra; San Juan; Papagallos; Hornito del
Gringo; Anchoris; Uspallata; Las Heras; "Termas de Talacasto.

27.- Brachistosternus (Leptosternus) castros Mello—Leitao, 1940.

Brachistosternus castro. Mello-Leitao, 1940, 44: 231, fig. 21;

Mello—Leitao, 1945, 40: 226-228, fig. 95; Ringuelet, 1953, 6(43):
278; Bicherl, 1959, 29: 272; Cekalovic, 1966, 10(118): 5; Cekalovic, 1969,
42: 71-73; Aguilar y Meneses, 1970, 8(1-2): 3.

Brachistosternus (Leptosternus) castro. Maury, 1973, 32(85): 249.

Localidad típica: CHILE. Atacama: Copiapó (Tipo depositado en el Mu-
seu Nacional, Río de Janeiro).

Distribución: CHILE. Atacama: Copiapó; ARGENTINA. Jujuy; Camino
entre Salta y Socompa; PERU. Lago Titicaca (Desaguadero).

28.- Brachistosternus (Leptosternus) chilensis Kraepelin, 1911.

Brachistosternus intermedius chilensis Kraepelin, 1911, 28(2): 87.
Brachistosternus (LePtosternus) chilensis Maury, 1973, 32(85):
249.

Localidad típica: CHILE. Aconcagua: La Ligua DE no se obtuvo in-
formación donde se encuentra depositado).

Distribución: CHILE. Aconcagua: La Ligua.

29.- Brachistosternus (Leptosternus) donosoi Cekalovic, 1974,

Brachistosternus Leptosternus) donosos Cekalovic, 1974, 47: 250-
254, figs. 11-20; Cekalovic y Artigas, 1981, 51(2): 81.

Localidad típica: CHILE. Tarapacá: Pampa del "Tamarugal, km. 10 Este
de Pica (Holotipo depositado en el Museo de Zoología de la Universidad
de Concepción, MZUC).

Distribución: CHILE. Tarapacá: Pampa del Tamarugal.

56 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

30.- Brachistosternus (LePtosternus) intermedius Lónnberg, 1902.
Brachistosternus Weljenberghi intermedius Lónnberg, 1902, 23:
20D%

Brachistosternus intermedius Kraepelin, 1911, 28: 86-88; Mello—
Leitao, 1931, 33: 95; Werner, 1935, 5(8): 290; Mello—Leitao, 1939,
27: 611; Mello—Leitao, 1945, 40: 233-234; Vachon, 1952, p. 26; Ringuelet,
1953, 6(43): 277-284; Búcherl, 1959, 29: 272; Cekalovic, 1966, 10(118): 6.
Brachistosternus (Leptosternus) intermedius Maury, 1973, 32(85):
249:

Localidad típica: ARGENTINA. Salta: Ojo de Agua (Tipo, no se obtuvo
información donde se encuentra depositado).

,

Distribución: CHILE. Norte de Chile, sin indicar localidad. BOLIVIA.
Sin indicar localidad; ARGENTINA. Salta: Ojo de Agua.

31.- Brachistosternus (Leptosternus) negrei Cekalovic, 1975.

Brachistosternus (LePtosternus) negrei Cekalovic, 1975, 6: 69-75,
figs. 1-10; Cekalovic y Artigas, 1981, 51(2): 81.

Localidad típica: CHILE. Talca: 22 millas al N de Talca (Holotipo depo-
sitado en el Museo de Zoología de la Universidad de Concepción, MZUC).

Distribución: CHILE. Talca: 22 millas al N de Talca.

32.- Brachistosternus (LePtosternus) weijemberghii (Thorell), 1876.

Telegonus weljemberghi Thorell, 1876, 19: 173-176.
Telegonus ferrugineus Thorell, 1876, 19: 176-178.
Brachistosternus welijemberghi Kraepelim, 1896, 13: 144-145,
lám. 1, fig. 26a; Kraepelin, 1899, 8: 192; Borelli, 1899, 12(336):
6, Borelli, 1900, 4: 61-62; Borelli, 1901, 16(403): 8-9; Simon, 1904, 73:
Ira ecpelia 1911-29: 88; Penther 19138: 2772415 Melo Eeitao, 1931;
33: 95; Mello—Leitao, 1945, 40: 235-238, figs. 100-102; Ringuelet, 1953,
6(43): 277-284; Cekalovic, 1966, 10(118): 6; Roig, 1973, 4: 200.
Brachistosternus (Leptosternus) weryemberghii Maury, 1973, 32
(85): 249.

Localidad típica: ARGENTINA. Sin indicar localidad (Tipo, no se obtuvo
información donde se encuentra depositado). 5

Distribución: CHILE. Valparaíso: Valparaíso; ARGENTINA. Córdoba;
PERU. Sin indicar localidad; PARAGUAY. Sin indicar localidad. :

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983. 57

Familia BUTHIDAE Simon, 1879
Subfamilia ISOMETRINAE Birula, 1917

Género Centruroides Marx, 1899

In Howard. Proc. U. S. Nat. Mus. 12: 211

33.- Centruroides margaritatus (Gervais), 1841.

Scorpio margaritatus Gervais, 1841, 1: 281-282, pl. 1, figs. 13-17.

Scorpio (Atreus) edwardsii Gervais, 1844, 3: 53; Gervais, 1844,

4216217 am ies SSA Gervais 0997 IEPS pi. 1, figs.
1—la—b.

Scorpio (Atreus) degeeri Gervais, 1844, 3: 54; Gervais, 1844, 4:

217-218, lám. 11, figs. 16-17.

«Scorpio margaritatus Gervais, 1844, 3: 55; Gervais, 1844, 4: 224.

Tityus carinatus C. L. Koch, 1845, 11: 2, fig. 851.

Tityus macrurus C. L. Koch, 1845, 11: 16-19, fig. 859.

Tityus ducalis C. L. Koch, 1845, 11: 38-39, fig. 869.

Centrurus degeeri "Thorell, 1876, 19: 167; Kraepelin; “1891;8*

277; Kraepelin, 1890, 8: 133.

Centrurus gambiensis Karsch, 1879, 3: 123-124.

Centrurus margaritatus Pocock, 1893, 24: 386; Kraepelin, 1894,

ESO trae peltr + 1SOSPASEm9S 94 Borelll "ISg9 1338): 95
Borelli, 1899, 14(345): 11; Pocock, 1899: 836; Banks, 1900, 34: 425; Pen-
ther, 1913, 27: 240; Lampe, 1918, 70: 197; Porter, 1920, 24(5): 160;
Goetsch, 1930, 2a. serie, 8: 1452.
? Rhopalurus margaritatus Meise, 1934, 74: 30.

Centruroides margaritatus Pocock, 1902: 30; Ewing, 1928, 73(9):

15; Hoffman, 1932, 3: 246=249;: Moreno, 1939, 13(2): 715 Werner,
1939, 5: 355; Moreno, 1940, (26-27): 61; Mello—Leitao, 1940, 1: 51; Roe-
wer, 1943, 26(4): 218; Mello-Leitao, 1945, 40: 260-265, figs. 109-112;
Crome, 1956, 167: 66; Búcherl, 1959, 29: 268; Gajardo, 1959, 15(1): 25-38;
Días—Najera, 1964, 24(1): 19; Schenone, H. y H. Reyes, 1965, 20(4): 107;
Cekalovic, 1966, 10(118): 2; Díaz-Najera, 1966, 26(2): 111; Aguilar y Me-
neses, 1970, 8(1-2): 3; Díaz-Najera, 1975, 35: 3, 22, 33; Lamoral y Reyn-
ders; 1975, 22(2):"506; 'Francke, 1977, *20(1): 75.

Localidad típica: ECUADOR. Isla de la Punta (Guayaquil). (Tipo, no se
obtuvo información donde se encuentra depositado, presumiblemente
extraviado).

58 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

Distribución: CHILE. Norte de Chile (sin indicar localidad precisa);
Valparaíso: Valparaiso; Malleco: Victoria; CUBA; ANTILLAS; GUAYA-
NAS; GUATEMALA (Costa Grande); COLOMBIA; VENEZUELA;
ECUADOR (Golfo de Guayaquil); PERU (T'umbes?); MEXICO (Du-
rango; Tayutita; Veracruz); TRINIDAD; IHLA PUNA.

Género Isometrus Hemprich € Ehrenberg, 1829
Symb., phys., Scorp.

34.- Isometrus maculatus (De Geer), 1778.

Scorpio europaeus Linnaeus, 1758: 625.

ScorPio maculatus De Geer, 1778, 7: 346.

Scorpio dentatus Herbst, 1800, 4: 55.

Scorpio americanus Herbst, 1800, 4: 60; Koehler, 1832, p. 6.

Scorpio (Lychas) gabonensis Lucas, 1858, 2: 430.

ScorPio (Lychas) guineensis Lucas, 1858, 2: 432.

Buthus (Isometrus) filum Hemprich € Ehrenberg, 1828, p. 3.

Lychas maculatus C. L. Koch, 1845, 12: 1-2, fig. 960; Cambrigre,

1869, 543; Kraepelin, 1899: 66; Simon, 1876, p. 219; Karsch,
1879, p. 370; Pavesi, 1881, p. 537-538; Kraepelin, 1891, pp. 103-106;
Kraepelin, 1898, p. 4.

Lychas americanus C. L. Koch, 1845, 12: 1.

Lychas paraensis C. L. Koch, 1845, 12: 6.

Atreus filum Gervais, 1844, 3: 52.

Centrurus (Isometrus) americanus Peters, 1861, p. 515.

Isometrus europaus Pocock, 1899, p. 835; Pocock, 1902, p. 11;

Borelli, 1911, p. 13; Borelli, 1913, p. 220; Kraepelin, 1913, p.
183; Loveridge, 1925, p. 308; Ewing, 1928, (2730), 79(9): 23; Werner,
1933, p. 324; Caporiaco, 1936, p. 141; Werner, 1936, p. 182; Caporiaco,
1937, p. 359; Caporiaco, 1939, p. 306; Moriggi, 1941, p. 93; Caporiaco,
1941, p. 35; Roewer, 1943, p. 217; Millot, 1948, p. 138; Takashima, 1948,
10: 72-92; Takashima, 1950, 12: 17-20; Probst, 1973, pp. 325-326, fig. 13.

Isometrus europeus quinquefasciatus Franganillo, 1930, (26);

Franganillo, 1934, 8(3): 166.

Isometrus maculatus Thorell, 1876, (4), 17: 8; Pavesi, 1881, p.

537; Simon, 1884, 20: 370; Keyserling, 1885, 2: 6; Thorell, 1888,
p. 405; Kraepelin, 1891, 8: 103; Pocock, 1893, a, p. 88; Lónnberg, 1897,
p. 185; Kraepelin, 1899, 8: 66; Simon, 1899, p. 120; Werner, 1902, p. 599;
Kraepelin, 1912, 30: 134; Comstock, 1912, p. 26; Ihering, 1915, (3), 5(2, 3,
4): 53; Kraepelin, 1916, 10(2): 34; Lampe, 1918, 70: 195; Mello-Campos,
1924, 17(2): 260-261, Glauert, 1925, 11(11): 117-118; Ewing, 1928, 73(9):

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 59

Zo Wemner 1930) 21182; Moreno, 1939 13(2)0 0305. /Wemer, 1939, 15
357; Mello-Leitao, 1945, 40: 241-243; Magalhaes, 1946, 4(3): 5; Donoso—
Barros, 1948, 76(5): 279; Crome, 1956, 167: 66; Gajardo-Tobar, 1959, 15
(1): 31; Búcherl, 1959, 29: 258; Glauert, 1963, 8(8): 183; Búcherl, 1967, 5
113; Probst, 1967, 74(3): 616-619; Gysin et Coroller, 1968, 46: 64-75;
Vachon, 1972, 16: 169-179, Lamoral y Reyders, 1975, 2(2): 508-509; Ar-
mas, 1976, 5: 3; Koch, L. E., 1977, 5(2): 152-155, fig. 44, Map. 6a—b; Fran-
cke y Sisson, 1980, 65: 17.

Localidad típica: EUROPA. (Tipo, no se obtuvo información donde se
encuentra depositado).

Distribución: COSMOPOLITA. CHILE. Isla de Pascua: Anakena, Mata-
veri, Vinapu, bajo corteza de “eucaliptus” Eucaliptus sp. No existe regis-
tro para Chile continental.

Familia IURIDAE Thorrel, 1876

Subfamilia CARABOCTONINAE Kraepelin, 1905.
Tribu Caraboctonini Francke y Soleglad, 1981.

Género Caraboctonus Pocock, 1893.
Ann. Mag. Nat. Hist. (6), 12: 92.

35.- Caraboctonus keyserlingi Pocock, 1893.

Caraboctonus keyserlingi Pocock, 1893, (6), 12: 92-94, pl. 5, fig. 8;

Kraepelin, 1894, 11: 210-211, pl. 3, fig. 84; Kraepelin, 1898, '8:
189; Mello-Leitao, 1945, 40: 126-129, figs. 38-39; Biicherl, 1959, 28: 271-
272; Cekalovic, 1966, 10(118): 3; Vachon, 1973, 104(140): 825-826; Stahnke,
191411225 Maury, 197 17(1)7 10:

Dotáida típica: CHILE. Coquimbo (Tipo, mo se obtuvo información
donde se encuentra depositado, debería estar en el British Museum).

Distribución: CHILE. Atacama: Lomas de Huasco; Coquimbo: Coquim-
bo; Aconcagua: Punta Molles; Santiago: Santiago; Valparaíso: Valparaíso;
PERU. (Posiblemente sur del Perú).

60 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

Género Hadruroides Pocock, 1893.
Ann Mag: Nat. Elist (0) 1213929:

36.- Hadruroides lunatus (C. L. Koch), 1867.

Telegonus lunatus Koch, 1867, 17: 235-237.

Hadrurus maculatus Thorell, 1876, 19: 186.

Hadrurus parvulus Karsch, 1879, 3: 135.

Hadrurus charcasus Karsch, 1879, 3: 135.

Hadrurus Paaschi Karsch, 1881, 25: 290.

Hadruroides robustus Boeris, 1888, 7: 125-126.

Caraboctonus charcasus Pocock, 1893, (6), 12: 92.

Caraboctonus maculatus Pocock, 1893, (6), 12: 92.

Hadruroides charcasus Pocock, 1893, (6), 12: 329.

Hadruroides maculatus Pocock, 1893, (6), 12: 329.

Hadruroides lunatus Kraepelin, 1894, 11: 207-209, pl. 3, figs.

83-84; Kraepelin, 1889, 8: 188-189, fig. 54; Borelli, 1899, 14
(345): 18; Pocock, 1900, 5(7): 474-475; Chamberlin, 1920, 3(2): 35; Wer-
ner, 1935, 5(4): 284, fig. 366; Mello—Leitao, 1940, 44: 232; Roewer, 1943,
26(4): 236; Mello—Leitao, 1945, 40: 120-125, figs. 33-37; Ringuelet, 1953,
6(43): 282; Munizaga y Herera, 1959, 1: 5; Búcherl, 1959, 29: 271; Gajar-
do—Tobar, 1959, 15(1): 25-38; Bucherl, 1964, 31: 61; Cekalovic, 1966, 10
(118): 2, 3; Aguilar, 1968, 6(3-4): 166-167; Aguilar y Meneses; 1970, 8(1-2):
2; Kinzelbach, 1973, pp. 4-9, figs. 4-7; Stahnke, 1974, 1: 122; Maury,
ADS Prack ZO O Alar 1977 20 (1):

Localidad típica: PERU. Callao (Tipo en el Zoologische Museum, Ham-
burgo).

Distribución: CHILE. Antofagasta: Socaire; Atacama: Lomas de Huasco;
Termas de Socos, Quebrada Talinay; Valparaíso: Valparaíso, Casablanca;
Aconcagua: Punta Molles; Maule; Constitución; COLOMBIA. (Sin indicar
localidad); ECUADOR. Islas Galápagos; BOLIVIA. (Sin indicar locali-
dad); PERU. Callao; Lima; Ancash; Ica; Arequipa; Paita; Matucana; Isla
Lobos de Tierra; Isla Chincha; Pallasca; Sayan; Chosica; Surco; Carretera
Lima—Huampaní; Lomas de Granado; La Molina Vieja; Trujillo; Huam-
paní; San Bartolo; Chaclacayo; Valle del Cañete; Canta; Lauca; Huachi-
pa; Lomas de Atocongo; Valle del Chillón; Cajamarquialla.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

61

COORDENADAS DE LOS LUGARES GEOGRAFICOS DE CAPTURA

DETESCORPIONESCENACENEE:

Agua de la Gloria (lugarejo)

Alamos (aldea Los)
Anakena
Arica

Baguales (río de Los)
Barranca Negra
Blanco (río)

Blanco (río)

Bulnes

Cachinal de la Costa
Calafquen (lago)
Caldera

Caracol (cerro)
Casablanca

Castillo (cerro)
Castro

Chaimávida (estero)
Chapo (lago)
Chupones (fundo Los)
Concepción
Constitución
Contulmo

Copiapó

Coquimbo

Coronel

Curacautín
Curanilahue

Dalcahue

El Canelo
Entre Lagos

Florida
Fray Jorge (bosques de)
Futrono

Guayacán (Lomas de)
Guido (cerro)

Huasco (Lomas: de)
Hualpén -

369
E
2

53'S;
39'S;
06'S;

ASIS:

AS
SONS:
O
ORO
IAS:

DOS:
ZAS:
2 04;
225078
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ZAS:
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ELIAS:
0248:
ZN:
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729
719
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729
719
739

54W
28"W
22'W
20"W
25"W
36"W
45"W
18"W
19"W

38 "W.

10"W
51"W
02"W
25"W
37"W
45 W
54W
30"W
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02'W
26"W
13"W
21"W
22 W
10"W
54 'W
21'W
38"W
27 W
00"'W
41"W
40"W
25'W
22W
28 "W
15'W
12W

169

240

100

220

400

22

1399

843

70

m

Bus

62

La Chimba

La Ligua

La Península
Las Escaleras
Lago Caburgua
Lago Nordenskóld
Laguna Amarga
Laguna Figueroa
Laraquete
Leandro (Caleta)
Lebu

Mataverl
Maullín

Mocha (Isla)
Molco (lugarejo)
Molles (Punta)

Osorno

Pampa del Tamarugal
Paposo (Cuesta)
Pascua (Isla)

Paso del Inca
Pemehue

Penco

Pinares

Peñuelas (Lomas de)
Pucatrihue

Puerto Montt
Puerto Varas

Quebrada Honda

Ramadillas
Ramuntcho
Rinconada Maipú
Rincón Negro

Salto del Payne

San Fabián de Alico
San Ramón (cerro)
San Vicente
Santiago

Serena

Socaire

Socos (Termas de)
Solitario (cerro)

Talca (22 millas al N.)
Talinay (Quebrada)
Temuco

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

23
322
So
369
399
Da
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DIS
379
369
SE

2
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389
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2092
259
279
282
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369
369
292
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4-19
419

369

SN
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389

O
259;
1548;
11'S;

07 S;

01'S;
00'S;
ZO
10'S;
38'S;
SUIS:

702 25"W
719 16"W
722 41" W
732 46"W

719 40'W
719 40"W
7122 35"W

58 m

27 m

240 m

27 m

4.800 m
2.000 m

3.240 m

3.503 m

113 m

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 63

Timar (Oasis) -189 44'S; 699 41"W
Tomé 36% 37'S; 722 57"W
Totoralillo (Est. FF. CC.) TASAS OIR" LO 1
Traiguén (Ensenada) OS OTAN
Trancura (río) IZ SIS ZN EDO 0
Tregualemu 399 9983. 123. 20. W,
Tumbes (Península) 362 39'S; 732 06"W
Valdivia A E A
Valparaíso 398 0S SL ON)
Victoria ' IE AA
Villarrica 392 20'S; 722 08"W 250 m
Vinapu 272 10'S; 1099 25"W
Viña del Mar SIRO 2S MASSON
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CHIASOGNATHUS GRANTI STEPHENS, 1831 (COLEOPTERA

LUCANIDAE), DESCRIPCION DE LA LARVA Y NUEVAS
LOCALIDADES PARA LA ESPECIE

Chiasognathus granti Stephens, 1831 (Coleoptera, Lucanidae), descrition
of the larva and new localities for the species.

TOMAS CEKALOVIC K.* y MATILDE CASTRO M.**

RESUMEN
Se describe el estado larval de Chiasognathus granti en base a dieciseis ejem-
plares procedentes de la Región XI (Chile). Uno de los ejemplares es designado nepio-
notipo. Además, se dan a conocer veinticinco nuevas localidades para esta especie como
resultado de los especímenes estudiados y conservados en el Museo de Zoología de la
Universidad de Concepción (MZUC).

ABSTRACT
Sixteen larval specimens of Chiasognathus granti collected in XI Region (Chi-
le) are here described. One of these is designated as the Nepionotype. In addition,
twenty five new localities for C. granti are also included, all the specimens are deposited
in the Zoological Museum, University of Concepción (MZUC).

Keywords: Coleoptera. Lucanidae. Larval anatomy. Neotropical Region. Chile.

INTRODUCCION

Revisando el material recolectado en las expediciones Zoológicas
a la Carretera Austral “Presidente A. Pinochet”, efectuadas en Mayo de
1981 y Enero/Febrero de 1982, hemos separado los especímenes inmaduros
(larvas) y adultos, con los que se desarrolló el presente trabajo. Chiasog-
nathus grant: Stephens 1983, conocido como “ciervo volante”, “cantabria”,
“cacho de cabra”, entre otros, es uno de los coleópteros más llamativos

*Curador de Museo, Depto. Zoología, Fac. Cs. Biol. y Rec. Nat. Universidad de Concepción, Casilla 2407,
Concepción, Chile.

**Profesora de Pedagogía en Biología, Concepción, Chile.

79 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

presentes en Chile, existiendo varios trabajos (Montealegre, 1925; Ruiz,
1926; Ureta, 1934), sobre sus costumbres y hábitos, pero su estado larval
no había sido descrito.

Chiasognathus granti Stephens, 1831
(Figs. 1-16)

DESCRIPCION DE LA LARVA:
(Figs. 2-16). Nepionotipo. CHILE. Región XI, Provincia Aysén: Cisne
Medio (44%45'S; 72200"W), Mayo 7, 1981, TT. Cekalovic.

CARACTERES CROMATICOS:

Color general blanco amarillento, excepto la cabeza que en la
cápsula cefálica es café rojizo y el clypeus, labrum y mandíbulas que
presentan una tonalidad café oscuro a negrusco, patas café amarillentas.

CARACTERES MORFOLOGICOS:

(Figs. 2-16): Larva tipo eruciforme o scarabaeiforme (fig. 2).
Cabeza robusta y bien constituida. Pro, meso y metanotum subiguales, el
pronotum presenta un espiráculo (spr) subcircular con la placa espiracular
en forma de “C” cerrada; el meso y metanotum carentes de espiráculo.
Tergites 1 y II de superficie parcialmente lisa y pilosa; tergites 111 al VI
con abundantes tubérculos setígeros en forma de domo o cúpula y, algunos
largos pelos esparcidos; tergites VII al IX de superficie opaca, lisa, lige-
ramente corrugada; tergite X presenta en el área latero-basal, algunos
tubérculos setígeros y en su extremo se observan dos notables ampullas
rodeadas por el tubérculo anal ventral dividido; en la región superior
se visualiza levemente el lóbulo anal dorsal (fig. 16). Espiráculos presentes
en los tergites 1 al VIII, siendo elípticos y decreciendo en tamaño del 1 al
V; de los tergites VI al VIII los espiráculos son subcirculares, similares
a los existentes en el pronotum (figs. 2, 8, 9).

Esternites 1 al IX de superficie lisa y brillante, salvo el X que
posee algunos tubérculos setígeros dispuestos al azar.

Pata prototoráxica (fig. 13): de menor tamaño que las restantes;
coxa (cx), fémur fe), tibia (tb) y tarso (ta) con abundantes pelos setiformes;
coxa 1, fémur y tibia de una longitud de 2 mm cada una; tarso de 1.5 mm
de largo; la tibia presenta en su parte apical una expansión lobular externa.

Pata mesotaráxica (fig. 14): una y media vez el largo de la pata
I; coxa y fémur el doble del largo de los de la pata anterior; tibia de
igual tamaño que la precedente, con la expansión lobular externa muy
desarrollada y con abundantes pelos setiformes; la coxa presenta, además,
en su cara interna órganos estriduladores (oe), dispuestos en una sola
hilera desde su parte media a la apical.

| Pata metatoráxiva (fig. 15): una un cuarto vez el largo de la pata
l; el fémur es delgado y dos veces la longitud del de la pata I, portando
en la cara externa los órganos estriduladores en toda su extensión; tibia
igual en tamaño a la de la pata 1; trocánteres (tr) de todas las patas redu-
cidos y poco notorios; tarsos de las tres patas de igual tamaño portando.
uñas cortas y cónicas.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 73

CABEZA EN VISTA DORSAL:

(Fig. 11): Cápsula cefálica subcircular, de superficie ligeramente
punteada y brillante; sutura epicraneal (spe) en forma de “Y” muy abierta:
bordes lateral y basal convexos; margen apical levemente cóncavo; ángulos
latero-anterior oblicuos de los que se originan las antenas (ant), (fig. 5)
que están formadas por cuatro segmentos; ocelos ausentes; mandíbulas
(md), (figs. 3, 4, 7) asimétricas, gruesas y robustas, de extremo apical no
aguzado; clypeus (cly), (fig. 10) trapezoidal, con dos pares de pelos; labrum
(Ibr), (fig. 10) más o menos subpentagonal presentando en su superficie
diez setas de acuerdo a la disposición indicada en la figura y portando
además, en el margen anterior una secuencia de mumerosas setas cortas
dirigidas hacia adelante.

CABEZA EN VISTA VENTRAL

(Fig. 12): Foramen magnum (fm) circular, ocupando la mitad del
largo de la cápsula cefálica; sutura gular (sg) oblicua y levemente sig-
moidal; galea (ga) y lacinia (la) globosas con abundante pilosidad desor-
denada; submentum (sm), y prementum (prm) son rectangulares; palpos
labiales (plb) cortos y de dos segmentos; maxila (fig. 6), cardo (ca) con
abundantes setas cortas y amarillentas; stipe (st) y maxila (mx) fusionadas
presentando numerosos pelos delgados; palpos maxilares (pmx) de cuatro
segmentos, con presencia de cortas setas amarillentas.

Fig. 1.- Chiasugnathus granti Stephens, 1831.

MEDIDAS DE LA LARVA

(Tomadas en milímetros en base a un ejemplar conservado en

alcohol 70%, y procedente de la Prov. de Aysén: Puente zaranda, mayo 7,
1981, T. Cekalovic):

Largo total 82.3 mm; largo cabeza 9.5 mm; ancho cabeza 9.0 mm; largo antenas 5.3 mm;
largo pronotum 4.1 mm; ancho pronotum 12.0 mm; largo mesonotum 4.9 mm; largo
metanotum 3.8 mm; largo abdomen 6.8 mm.

74 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

LOCALIDADES DEL MATERIAL EXAMINADO

oo —+=+=+=+=+=+=+=+=+—+=+=+=+=+++— AA

LOCALIDADES NUEVAS COORDENADAS ADULTOS
: 8 Q LARVAS

Concepción 360 54'S; 730 02'"W 1 = E
Contulmo 380 02'S; 730 13"W 1 E El
Lago Lanalhue 370 56'S; 730 18"W 1 — —
Termas de Pemehue 380 00'S; 710 38"W 1 = pa
Angol 370 48'S; 720 42"W 1 = cas
Curacautín 380 26'S; 710 54"W 6 3 —
Cautín 380 40'S; 720 26'W 32 13 =
Lago Caburgua SOS OEA — 1 -
Antilhue 390 47'S; 720 58"W 1 ES =
Valdivia* 390 49'S; 730 14'W 2 = =a
Río Bueno 409 16'S; 720 40"W = 1 EOS
Puyehue 400 40'S; 720 10'W 2 9 de
Pto. Octay 400 59'S; 720 52'W 5 2 —
Llanquihue 410 14'S; 720 58"W 1 = =
Frutillar 410 08'S; 7309 00"W 5 7 2
Mocopulli 420 20'S; 730 40"W = 1 =
Nercón 420 30'S; 730 48"W 1 Eb pe
Chaitén. 420 54'S; 720 45"W 14 7 6
Río Michimahuida 420 58'S; 720 23"W 27 4 3
Pto. Cárdenas 430 13'S; 720 29"W 11 3 =
Lago Yelcho 430 20'S; 720 16"'W - 1 a
Río Cisne Medio 440 45'S; 720 00"W — — 2
Puente Zaranda 440 47'S; 720 15'W — o — 5
Lago Las Torres AOS MZ IZAN 2 1 =
Coyhaique 450 30'S; 719 50"W 12 2 =
Río Simpson 450 30'S; 720 14'W 1 = =

*Localidad antes conocida

Chiasognathus grant: estaba citada sólo para algunas localidades
como Pichibureo, (Ruiz, 1927); Corral (Philippi, 1859); Valdivia (Montea-
legre, 1925, Solier 1851); y Aysén (Ureta, 1935); (Numhauser, 1981) en
un trabajo bien documentado analiza las facetas históricas de las especies
del género Chiasognathus Stephens y aclara la problemática en los cambios
sinonímicos. Con la revisión del mterial existente en la colección zoológica
de la Universidad de Concepción (MZUC) de los especímenes recolectados
en las últimas expediciones damos a conocer veintitrés muevas localidades
individualizando con un asterísco (*) en el cuadro una de las localidades
previamente conocidas.

Los dibujos se realizaron mediante cámara clara en un micro-
estéreoscopio Leitz IV, basados sobre ejemplares procedentes de las siguien-
tes localidades: Prov. Aysén: Puente Zaranda y Cisne Medio.

Chiasognathus granti Stephens, 1831

Fig. 2.- Larva, vista lateral; Fig. 3.- Mandíbula izquierda, vista superior; Fig. 4.- Mandí-
bula derecha, vista superior; Fig. 5.- Antena; Fig. 6.- Maxila, stipe y palpos maxilares;
Fig. 7.- Mandíbula derecha, vista interna; Fig. 8.- Espiráculo, tergite 1; Fig. 9.- Espiráculo
tergite VIII; Fig. 10.- Clypeus y labrum; Fig. 11.- Cabeza en vista dorsal; Fig. 12.- Cabeza
en vista ventral; Fig. 13.- Pata prototoráxica; Fig. 14.- Pata mesotoráxica; Fig. 15.-
Pata metatoráxica; Fig. 16.- Tergite X, cojinetes y lóbulos anales,

76 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

AGRADECIMIENTOS

El presente trabajo fue realizado gracias a la colaboración pres-
tada por las siguientes personas: Sr. Antonio Horvath K., Director Regio-
nal de Vialidad de la XI Región; Sr. Lorgio Oñate de Coyhaique, por las
facilidades otorgadas en terreno, y a los Sres. M. Pino, E. Oehrens, “T.
Alejandro Cekalovic, H. Moyano, C. Torrejón, P. Fernández, V. H. Ruiz,
A. Hidalgo y Srtas. A. Quezada, E. Casanueva y L. Ulloa, por la captura
de especímenes. Se agradece, además, al Sr. Ricardo Utz B. por la termi-
nación de los dibujos y a la Srta. M. Salazar por mecanografiar los origi-
nales.

Abreviaturas utilizadas:

ant= antena; am= ampulla; ca=cardo; cly= clypeus; cx= coxa; fe= fémur; fm=
foramen magnum; ga= galea; la= lacinia; lbr= labrum; md= mandíbula; mx= ma-
xila; oe= órgano estridulador; plb= palpos labiales; pm= prementum; pmx= palpos
maxilares; sep= sutura epicraneal; sg= sutura gular; sm= submentum; spr= espirá-
culo; st= stipe; ta= tarso; tav= tubérculo anal ventral; tb= tibia; tr= trocánter; u=
uña; MZUC= Museo de Zoología, Universidad de Concepción.

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LAS BOLETACEAE EN PLANTACIONES DE PINUS RADIATA
D. DON EN CHILE. (FUNGI, BASIDIOMYCETES)

The Boletaceae from Pinus radiata D. Don in plantations in Chile
(Fungi, Basidiomycetes)

NORBERTO GARRIDO G.*

RESUMEN
Se describen, ilustran y se mencionan algunos aspectos ecológicos de las Bole-
taceae asociadas a plantaciones de Pinus radiata D. Don. Phaeogyroporus beniensis
Sing. et Dig. se cita por primera vez para Chile. Al mismo tiempo, se entrega una
clave de todas las Boletaceae citadas para el país.

ABSTRACT
The author gives descriptions, illustrations and ecological aspects for Bole-
taceae associated to Pinus radiata D. Don plantations in Chile. Phaeogyroporus be-
niensis Sing. et Dig. is reported for the first time for Chile. In addition, a key of all
Boletaceae cited for Chile is given.

Keywords: Fungi. Boletaceae. Soil Science. Pinus radiata culture.

INTRODUCCION

Para la flora micológica chilena, 17 Boletaceae (sensu lato) han
sido citadas por diferentes autores (Bertero 1828, 1829; R. A. Philippi
1869; F. Philippi 1893; Gotschlich 1913; Espinosa 1915, -1916, 1926;
Cardemil 1919; Moore 1926; Santa Cruz 1932; Johow 1948; Singer y
Digilio 1957; Singer 1963, 1964, 1968, 1969; Mikola 1969; Horak 1977;
Lazo et al. 1977; Mujica y Oehrens 1980).

El material citado por Bertero como Boletus cervinus Schw.,
B. fomentarius L., B. ignarius L., B. molluscus Pers. y B. paxulatus Bert.,
no corresponden a Boletaceae en el sentido actual sino a Aphyllophorales.
Teniendo en cuenta este hecho y la sinonimia de las especies citadas, sólo
ocho especies serían las actualmente válidas, de las cuales Boletus chilensis
Sing., B. loyita Horak, B. loyo Phil. ex Speg. y B. putidus Horak han sido

*Departamento de Botánica, Casilla 2407-10. Universidad de Concepción, Concepción, Chile. .

78 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54,- 1983.

dadas para el bosque nativo de Nothofaqus, y Boletus edulis Bull. ex Fr.,
Suillus luteus (L. ex Fr.) S. F. Gray, B. granulatus (L. ex Fr.) O. Kuntze
y Xerocomus chrysenteron (Bull ex St. Amans) Quél. son especies aso-
ciadas a plantaciones de coníferas introducidas. A estas ocho especies
citadas debemos agregar Phaeogyroporus beniensis Sing. et Dig., género
aun no reportado para la flora micológica chilena, con lo cual aumenta
a nueve el número de Boletaceae dadas para el país.

Las especies que nos ocupan crecen abundantemente en planta-
ciones y viveros de Pinus radiata; Sutllus luteus y Xerocomus chrysenteron
en asociación ectomicorrícica y PhaeogyroPorus beniensis como saprófito
en tocones de pino. Di %

La asociación ectomicorrícica de P. radiata con S. luteus y X.
chrysenteron ha sido ampliamente citada por numerosos autores (Slipp y
Snell, 1944; Trappe, 1962; Singer, 1963, 1964; McNabb, 1967; Mikola,
1969; Hepting, 1971; Chu-Chou, 1979). ed |

Las descripciones macroscópicas y de fluorescencia al U.V. (254
nm) se efectuaron a partir de material fresco. La sinonimia citada corres-
ponde, exclusivamente, a la dada para Chile. Los dibujos al microscopio
se efectuaron con cámara clara.

El material examinado se encuentra depositado en el Herbario
del Departamento de Botánica de la Universidad de Concepción. (CONC).

Clave para la determinación de las especies de Boletaceae presentes en
Chile*

l. Especies asociadas a bosques nativos de Nothofagus spp.
2. Píleo rojo a púrpura, estípite pruinoso, no reticulado.

3. Píleo de 100-200 mm o más de diám., seco o víscido ada
húmedo, poros pardo rojizos, muy pequeños, redondeados, estí-
pite de 80-150 x 40-70 mm,. clavado ventricoso.

Boletus loyo
(syn. Boletus loyus Esp.).
3” Píleo de 25-60 mm de diám., seco, poros amarillos, estípite de
- 40-100 x 10-20 min, fusiforme.
Boletus loyita
2” Píleo amarillo pardo a pardo oscuro, estípite pruinoso o reticulado.

4. Píleo menor de 110 mm de diám., pardo oscuro, estípite glabro
o pruinoso-flocoso, cistidio fusoide.

1Clave para las especies nativas tomada de Horak (1977) con algumas modificaciones a base de posteriores

observaciones de terreno efectuadas por el autor; para la descripción de estas especies ver Horak (L.c.).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 54, 1983. 79

Boletus putidus

4 Píleo de 80-200 mm de diám., pardo oscuro a amarillo-pardo,
estípite reticulado, cistidio clavado.

Boletus chilensis
l”” Especies asociadas a plantaciones arbóreas introducidas (Pinus spp.).
5 Estípite sin anillo

6 Estípite reticulado

4. Boletus edulis
6” Estípite no reticulado

7 Píleo amarillo citrino, a veces con manchas rosadas, con-
texto con látex transparente que se torna azul al auto-
oxidarse, esporas cortamente elípticas.

1. Phaeogyroporus beniensis

1” Píleo rojo a pardo amarillento, contexto sin látex, esporas
elípticas alargadas.

8 Píleo rojo carmín a pardo carmín burdeos, seco, poros
grandes, mayor de 2 mm de diám., al cortar se tornan
azul.

3. Xerocomus chrysenteron

8” Píleo pardo amarillento, glutinoso, poros menores de
1.1 mm de diám., amarillo pálido a ocre, no se tornan
azul al cortar o dañar.

5. Suillus granulatus

5” Estípite con anillo

2. Suillus luteus

1. Phaeogyroporus beniensis Sing. et Dig. Fig. 1.
Singer et Digilio, Lilloa 30: 150-151. 1960.

Píleo de 53-180 (300) mm de diám., convexo, con el centro aplanado o
levemente deprimido, glabro o levemente subtomentoso, víscido; amarillo
con manchas rosadas, luego algo más oscuro; contexto bien desarrollado,
esponjoso, amarillo pálido a ocre claro, con látex incoloro que se torna
azul por autooxidación; Igual reacción se produce en el material de her-
bario al humedecerlo con agua. Tubos de 2-40 mm de alto, anexos a libres,
poros pequeños menores de 0,5 mm de diám., amarillo pardusco muy

80 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, -1983.

AAA

Fig. 1.- Phaeogyroporus beniensis Sing. et Dig. b: basidios; c: carpóforos; e: esporas;
ep: epicutis; pl: pleurocistidios; q: queilocistidios.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 81

suave, al tocarlos viran a castaño. Estiíbite de 40-60 x 24-27 mm, bulboso-
ventricoso, luego anchamente cilíndrico, central, sólido, fibroso, subglabro
a liso, seco; amarillo citrino, con manchas moradas, especialmente, en los
extremos donde forman una especie de aureola morada; anillo ausente.
Sabor a fruta. Olor agradable (queque). Reacciones químicas: Formalde-
hído en el epicutis débilmente rojizo; HCl en el epicutis rojo; en el con-
texto, amarillo; en los tubos pardo chocolate; KOH en el epicutis rojizo;
en el contexto y tubos amarillo; FeSO4 en el epicutis pardo rojizo; en el
contexto granate. Fluorescencia: contexto naranja, extremo basal pardo
OSCUTO.

Impronta de esporas pardo oliváceo; esporas de 6-6,2 x 3,54 u, elípticas,
lisas, cortamente apiculadas, con depresión supraapicular plana, sin poro
germinativo, pardo claras al microscopio. Basidias de 20-24 x 7-7,5 u,
cilíndrico—clavadas, 4-esporadas hialinas; cheilocistidios de 20-42 x 7-8,5
u, abundantes, ventricosos a ventricoso-clavados, con el ápice apendiculado
a redondeado, hialinos a débilmente amarillentos por incrustaciones resi-
nosas; Pleurocistidios escasos iguales a los cheilocistidios. EPicutis formado
por hifas cilíndricas irregularmente entretejidas, con sus extremos termi-
nales redondeados, anchas (6-7,5 u de diám.), con pigmentos incrustantes;
hifas del contexto con hifas laticíferas ramificadas, pie con hifas finas
(1-2 u de diám.) y gruesas (10-17 u de diám.), incrustadas, usualmente
dicotómicas. Fiíbulas ausentes. Trama himenoforal bilateral, con hifas
cilíndricas dicotómicas.

Habitat: gregario, rara vez solitario, sobre suelo o entre corteza de tocones
muy podridos de Pinus radiata.

Distribución en Chile: Lomas Coloradas (Concepción).

Material examinado: Escuadrón, 14/4/79, Garrido 8 (CONC); Escuadrón,
18/4/79, Garrido 11 (CONC); Escuadrón, 4/3/80, Garrido 196 (CONC):
Escuadrón, 27/3/80, Garrido (CONC).

Observaciones: PhaeogyroPorus bentensis, especie aun no reportada para
nuestro país, es característica de la pluvisilva tropical (Singer y Digilio,
1960), donde presumiblemente forma pseudomicorriza peritrófica con.
especies arbóreas (Singer, 1964).

Los cuerpos frutales en nuestra zona se les encuentra en las
plantaciones costeras arenosas de pino insigne a comienzos de otoño
(Marzo-Abril), junto a GymnoPilus spectabilis (Fr.) A. H. Smith, desapa-
reciendo completamente con las primeras lluvias persistentes de la época
fría. Saprófito sobre o en la base de tocones de pino muy descompuesto
y con replantaciones jóvenes (6-12 años), esta especie junto a Mycena
cyanocephala Sing. constituirían el estado climático de la sucesión aga-
ricínica. Los carpóforos de Ph. beniensis están frecuentemente cubiertos .
de hierbas: Geranium berterianum Colla, Ornithopus compPressus L.,
Cynosurus echinatus L., Stipa sp. Holcus lanatus L., Lagurus ovatus L.

La especie, a diferencia de la descripción del tipo no posee
fíbula, probablemente, debido a una consecuencia partenogenética, donde
es probable esta anormalidad (Singer y Digilio, 1960). |

82 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Importancia económica: El género Phaeogyroporus es muy apreciado en
Argentina por su excelentes sapidez (Singer, 1964). Los extractos etanó-

licos crudos presentan una fuerte actividad antibacteriana (Garrido et al.,
1982).

2. Suillus luteus (L. ex Fr.) S. F. Gray, Fig 2

S. F. Gray, Nat. Arrang. Brit. Pl. 1: 646. 1821.
Boletus luteus L. ex Fr., Cyst. Mycol. 1: 386. 1821.

Pileo de 4-20 cm de diám., cuando inmaduro fuertemente convexo, luego
convexo a plano convexo, frecuentemente con un tubérculo o excrecencia
al centro, glabro, a veces claramente fibroso, radiado, borde con restos del
velo mucilaginoso; pardo chocolate a pardo rojizo suave o con un púrpura
insinuado por la gruesa capa de mucilago, epicutis fácilmente separable;
contexto bien desarrollado, firme, blanquecino a amarillo suave, no auto-
oxidable. Tubos de 5-30 mm de alto, adnados o subdecurrentes, blanco—
amarillento pálido en ejemplares jóvenes, luego amarillo ocre; poros
irregularmente angulares en corte transversal (0,5-1.1. mm de diám.), al
comienzo del mismo color de los tubos, luego pardo rojizo. Estípite de
4-9 x 1-2,5 cm, cilíndrico, central, sólido, amarillo pálido sobre el anillo
y con numerosas granulaciones pardas por la presencia de caulocistidios,
bajo en anillo de color pardo amarillento, levemente escuamuloso, gra-
nulaciones escasas y diseminadas; contexto blanco amarillento pálido,
anillo notorio, a veces se desintegra con la edad, colgante, gris violáceo o
blanco sucio en los ejemplares jóvenes, formado por hifas gelatinizadas
de 2-3 u de diám. Sabor dulce. Olor agradable. Reacciones químicas:
Formaldehído (—); HCl (—); KOH y NH40H en el contexto y tubos
rojos, luego azul oscuro; FeSO4 en el epicutis gris plomizo, en el con-
texto azul suave. Fluorescencia: contexto del pie naranjo pardo.

Impronta de esporas pardo amarillento; esporas de 7,4-9(10) x 2,5—,5 u,
fusiformes a elípticas subfusiformes, lisas, apiculadas, con depresión supra-
apicular plana; sin poro germinativo, de paredes delgadas, pardo arci-
llosas bajo el microscopio (en KOH). Basidios de 14-25 x 5-7 u, cilíndricos
clavados, 4-esporados hialinos; Cheilocistidios de 18-50 x 6-8,75 u, gene-
ralmente en grupos, cilíndricos a clavados, o con forma de masa o algo
fusiformes, lisos, hialinos, con paredes delgadas; pleurocistidios escasos,
semejantes a los cheilocistidios. Epicutis con hifas cilíndricas de 1-3 u,
de diám., paralelas, paredes lisas, delgadas, hialinas, gelatinizadas; derma-
tocistidios ausentes. Fíbulas ausentes. Trama himenoforal bilateral con
hifas cilíndricas.

Habitat: eregario u ocasionalmente cespitoso o solitario; sobre tierra en
: greg
plantaciones de Pinus radiata.

Material examinado: Chaimávida, 14/4/79, Garrido 6 (CONC); Monte

Aguila, 25/4/79, Garrido 18 (CONC); Chaimávida, 17/5/79, Garrido 31
(CONC); Monte Aguila, 3/6/79, Garrido 53 (CONC); Chaimávida, 16/

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 83

TAS
We,

ATAN

, ..
. .

ep Hou?

Fig. 2.- Suillus luteus (L. ex Fr.) S. F. Gray. b: basidios; c: carpóforos; €: esporas; ep:
epicutis; q: queilocistidios.

84 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

7/79, Garrido 90 (CONC), Chaimávida 14/8/79, Garrido 154 (CONC);
Escuadrón, 21/8/79, Garrido 158 (CONC); Escuadrón, 4/9/79, Garrido
170 (CONC); Chaimávida, 4/9/79, Garrido 173 (CONC); Monte Aguila,
11/9/79, Garrido 175 (CONC); Escuadrón, 25/9/79, Garrido 179 (CONC);
Chaimávida, 20/11/79, Garrido 185 (CONC).

Distribución en Chile: Viña del Mar a Osorno.

Observaciones: Suillus luteus es una especie originaria de las zonas tem-
peradas del Hemisferio Norte (McNabb, 1968); en su habitat natural se
encuentra en asociación micorrícica con numerosas coníferas, estacándose
entre otras: Pinus radiata (Hepting, 1971), Larix occidentalis (Slipp y
Snell, 1944), Picea abies y, posiblemente, Larix decidua (Singer, 1965),
Pseudotsuga menziesi (Trappe, 1962).

En nuestra región se encuentra en asociación micorrícica con
P. radiata y P. menziest; la aparición de carpóforos está marcada por el
inicio regular de las lluvias de otoño luego de la declinación de Tricho-
loma fagnani Sing., hasta fines de primavera.

S. luteus resultó ser una especie altamente competitiva y domi-
nante en plantaciones abiertas con estrato herbáceo o arbustivo y no
intervenidas. En cambio, en plantaciones alteradas (recién plantadas o
raleadas o podadas o cerradas) fueron dominantes otras especies mico-
rrícicas menos competitivas como Laccaria laccata (Scop. ex Fr.) Berk. et
Br., Hebeloma crustuliniforme (Bull. ex Fr.) Quél., Amanita gemmata
Fr. sensu Singer (1969), Tricholoma myomyces (Pers. ex Fr.) Lge., Inocybe
spp. Cortinarius spp. pero adaptadas a estas condiciones ecológicas
perturbadas, cuya intensidad, fructificación y persistencia en el tiempo
dependen del grado de alteración de la plantación.

Importancia económica: Suilus luteus es un excelente hongo comestible
(Slipp $ Snell, 1944; McNabb, 1968; Cetto, 1978; Moser, 1978), el cual
es exportado en grandes cantidades a Europa, constituyendo un impor-
tante subproducto del bosque de pino en la VIII Región. Sólo los car-
póforos jóvenes y los maduros en buen estado pueden ser consumidos
previa remoción de la capa de mucílago del píleo.

3. Xerocomus chrysenteron (Bull. ex St. Amans) Quél. Fig. 3.

Quélet, Fl. Mycol. 418. 1888
Boletus chrysenteron Bull. ex St. Amans, Fl. Agenaise 555. 1821.

Pileo de 35-75 mm de diám., hemisférico a convexo cuando joven, luego
plano convexo a subaplanado, borde finamente onduloso en ejemplares
maduros, superficie subfieltrosa (con pequeñas excrecencias puntiformes),

1Rubus comstrictus P. J. Muell. et Lefebre, R. ulmifolius Schott, Teline monspesulana (L.) C. Kock,
Geranium berterianum Colla, Oenothera stricta Ledeb. ex Link, Cirsium vulgare (Savi) Tenore, Orni-

thopbus compressus L., Trifolium arvense L., Aira caryophyllea L., Holcus lanatus L., preferentemente.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 85

Fig. 3.- Xerocomus chrysenteron (Bull. er St. Amans) Quél.; b.: basidios; c: carpóforos;
e: esporas; ep: epicutis; pl: pleurocistidios; q: queilocistidios.

86 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1985.

irregularmente cuarteada cuando maduras, seca; rojo carmín a pardo
carmín burdeos contexto bien desarrollado, esponjoso, blanco azuloso,
rosado o rojizo inmediatamente bajo el epicutis. Tubos menor de 12 mm
de alto, adnado-emarginados, poros angularmente irregulares, anchos,
mayor de 2 mm de diám., ocre, al cortar o destruir se tornan azul por auto-
oxidación. Estiípite de 30-65 x 12-20 mm, cilíndrico, más atenuado en
la base, casi napiforme, recto, a veces algo doblado, central, sólido, fina-
mente estriado superficialmente, fibroso, seco; rojo anaranjado amari-
llento rosado, con manchas más oscuras, hacia el ápice amarillento rosado,
y en el extremo basal ocre sucio, contexto blanco amarillento con manchas
carmín, en el extremo ocre, anillo ausentes. Sabor dulce. Olor agradable.
Reacciones quimicas: Formaldehido (—); HC] en el epicutis y contexto
siena tostada; KOH en el contexto siena natural, en los aubos pardo-os-
curo; NH40H (—); AgNO%3 en los tubos azul. Fluorescencia (—).

Impronta de esporas pardo ocre (miel); esporas de 11-12 x 3,75 u, fusoi-
de-elípticas, lisas, apiculadas, con o sin depresión supraapicular, sin poro
germinativo, paredes gruesas, pardo claro (en KOH). Basidios de 20-22,5
x 45,6 u, cilíndricas subclavadas, 4-esporados hialinos; Pleurocistidios de
24-27,5 ¿ 6-7,5 u, clavados a fusoide—clavados, paredes delgadas, hialinas;
cheilocistidios semejantes a los pleurocistidios. Epicutis con hifas cilín-
dricas, anchas (hasta 10 u de diám.) erectas o sub—erectas, intermezcladas,
débilmente incrustadas, con un contenido intracelular pardo—claro. Fíbu-
las ausentes. Trama himenoforal bilateral, con hifas cilíndricas alargadas.

Habitat: gregarios, rara vez solitarios, en viveros de Pinus radiata.

Distribución en Chile: Humán (observ. personal).
Material examinado: Vivero Humán (Los Angeles), 9/5/79, Garrido, 27,
(CONC).

Observaciones: Xerocomus chrysenteron especie característica de las regio-
nes templadas del hemisferio norte (McNabb), 1968), donde se encuentra
en asociación micorrícica con numerosas coníferas y otras especies arbóreas
(Trappe, 1962). En la VIII Región, Chile, ha sido recolectado, exclusiva-
mente, en viveros de Pinus radiata ubicados en suelos arenosos del interior
(zona de arenales del Río Laja), con alta humedad (hasta 33%) y con pH
de 5.35-5.40, donde es dominante junto a Rhizopogon roseolus (Corda)
Th. Fries, al inicio de las lluvias otoñales (Abril-Mayo), luego de la decli-
nación de Scleroderma citrinum Pers. que es muy abundante en esta área.

Singer (1969) indica que Xerocomus chrysenteron fructifica en
la región en plantaciones introducidas de Eucalyptus y Salix; ésta no ha
sido encontrada hasta el momento por el autor bajo estas especies arbóreas,
a pesar de las numerosas visitas efectuadas a las diferentes plantaciones
existentes a través de todo el país. Probablemente, el material citado por
Espinosa (1926) bajo Boletus chrysenteron Bull. corresponda a la primera
referencia para nuestro país de X. chrysenteron; desgraciadamente, esta
cita sólo incluye el nombre sin dar descripción, lugar, habitat u otra
referencia.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1985. 87

Importancia económica: Especie comestible (Herter, 1951; Konrad y Mau-
blanc, 1952; Lange y Lange, 1975; Cetto, 1978; Moser, 1978), consumién-
dose de preferencia carpóforos juveniles, ya que cuando maduros ad-
quieren consistencia esponjosa.

4. Boletus edulis L. ex Fr.

Fries, Syst. Mycol. 1: 392. 1821.

La única referencia de esta especie corresponde a Cardemil (1919)
quien citó esta especie para la zona de Valdivia.

5. Sutllus granulatus (L. ex Fr.) O. Kuntze

Kuntze, Revis. Gen. Pl. 3(2):535. 1898,

Esta especie comestible ha sido ampliamente reportada para el
país, por numerosos autores, bajo plantaciones de Pinus radiata D. Don
(Espinosa, 1926; Johow, 1945; Singer, 1963; Mikola, 1969, 1975; Lazo
et al., 1977) para la parte central y sur de Chile. En la VIII Región de
Chile, no ha sido hasta el momento recolectada a pesar de numerosísimas
y extensivas excursiones efectuadas por el autor a estas plantaciones.

AGRADECIMIENTOS

El autor desea agradecer a la Dirección de Investigación de la
Universidad de Concepción (Proyecto VIC 2.08.89) y a Cidere Bío-Bío
por el apoyo económico prestado. A los Profs. E. Oehrens, C. Marticorena
y R. Rodríguez de esta universidad, y, al Dr. E. Horak de ETH Zúrich,
por la revisión del presente trabajo.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, pp. 89- 101., 1983. 89

ECOLOGICAL ASPECTS AND CROP OF SUILLUS LUTEUS
(FUNGI, BOLETACEAE) IN PINUS RADIATA FORESTS IN THE
REGION DEL BIO-BIO, CHILE

Aspectos ecológicos y cosecha de Suillus luteus (Fungi: Boletaceae) en
bosques de Pinus radiata de la Región del Bío - Bío, Chile

N. GARRIDO,* C. MARTICORENA,** and E. OEHRENS***

ABSTRACT

Crop and ecological ospects of Suzllus luteus (L. ex Fr.) S. F. Gray, growing
in Pinus radiata D. Don forests in the Bio - Bio Region (the 8th Region) of Chile are
given. The sites studied were three lots per stand found in the phytogeographic for-
mations defined according to Pisano. Collections were made every fifteen days during
a 15 month period. These collections were correlated in each locality to biotic factors
(age and density of the plantings, human and animal action, and surrounding vegetation)
as well as abiotic factors (soil types, wind and rainfall).

Monte Aguila presented the greatest crop of S. luteus / ha.

RESUMEN

Se hace un estudio de los aspectos ecológicos y producción de Suillus luteus
(L. ex Fr.) S. F. Gray en plantaciones de Pinus radiata D. Don en la VIII Región
de Chile. La investigación se efectuó en 3 parcelas por rodal, distribuidas equitativa-
mente en 3 formaciones fitogeográficas defimidas según el esquema de Pisano, donde
se efectuaron recolecciones cada 15 días durante un período de 15 meses. Las recolec-
ciones fueron relacionadas con los parámetros bióticos (edad y densidad de las plan-
ciones, acción humana y de animales, y vegetación circundante), y abióticos (tipos de
suelos, temperatura, pH y humedad del suelo, energía incidente, vientos y precipita-
ciones) de cada localidad.

La localidad de Monte Aguila presentó la mayor producción de Suillus
luteus por hectárea. Se dan recomendaciones sobre el período óptimo de recolección
y modo de ejecutar la recolección.

Keywords: Fungi. Boletaceae. Suillus. Ecology. Edible fungi. Pinus radiata.

Depto. Botánica, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Casilla 2407, Universidad de

Concepción, Concepción, Chile.

90 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 54, 1983.

INTRODUCTION

In the last decade the wild fungi growing in Pinus radiata D.
Don forests have stimulated great economic interest. Edible chilean fungi
are prized in Europe due to their wide culinary usage. Suillus luteus (L.
ex Fr.) S. F. Gray is the most outstanding fungus of this type. It is a rene-
wable natural resource, easily recognizable and also has great acceptence
in the international market. The total export of brined Suillus luteus
from the 8th Region of Chile amounted to US$ 240,000 in 1978 and
nearly US$ 1.000,000 in 1979 (Cidere 1979). "This fungus has become an
important source of labor and sustenance for the rural population of
this region.

Ecological and crop studies made on S. luteus are becoming in-
creasingly important since, according to the National Forest Corporation
of Chile (CONAF), out of approximately 800,000 ha reforested with P.
radiata in Chile, 54.7%, has been planted in the 8th Region. This repre-

sents 10.2% of the total area of this Region. Furthermore, Suillus luteus
plays an important ecological role since it grows in ectomycorrhizal asso-
ciation with P. radiata (Trappe, 1962; Hepting, 1971; Chu-Chou, 1979).

The production of Suillus luteus in different stands of Pinus
radiata D. Don in the 8th Region, Chile, will be evaluated. As well, the
biotical and abiotic factors that control the abundance of this fungus,
leading to possible management of Suillus luteus, will be investigated.

MATERIALS AND METHODS

Biogeographical background of the different localities studied*
(see map).

Monte Agutla: (37926'S; 72215'W) is located within the “Forma-
ción de estepa con Acacia caven”, with sandy soil of the Coreo type.*

Chaimávida: (36915'S; 72254"'W) is located within the “Formación
de los matorrales de la Cordillera de la Costa” with clay soil of the San
Esteban type.

Lomas Coloradas: (36250'S; 73208"W) is located within the “For-
mación del matorral costero mesomórfico”.

Plots. The authors worked in Pinus radiata stands of different
ages ((1-5; 6-10; 11-15; 16-20; 21 years old) and stages of exploitation,
with three 33.3 m x 33.3 m (1,000 m?) plots per stand!. "The plots were
encircled with barbed wire and contained 800-2,500 trees/ha. In addition,
observations were made near the stands.

1These sites are located in three phytogeographic formations defined according to the Pisano scheme
(Pisano, 1956; Fuenzalida. 1965).

2The soils are mamed according to Int. Rec. Nat. (1964). >

3The size of the plots were chosen based on previous outings carried out during 1978.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 91

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Hajek £ Di Castri (1975 )

Collection methods. All localities were visited once every two
weeks for 15 months. Based on methods by Peyronel (1956), Bohus and
Babos (1960) and Kalamees (1968, 1971), carpophores present on non—
humified litter were collected.

The collection was carefully and thoroughly carried out along
specific pathways. The carpophores were weighed, counted and recorded
immediately.

Climatic conditions, rainfall data, maximum and minimum tem-
peratures and the temperature at 08:00 hrs.) were taken daily. The tempe-
rature underneath the non—humified litter was taken. According to the
method of Zinke (1962) and Jackson (1964) the soil pH and soil moisture

92 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

were taken biweekly. The soil pH was measured with a pHmeter. The
incidence of energy was measured at 10:00, 11:00 and 12:00 A.M., with
a quanto-radio-photometer LI 180 and the wind with an anemometer
(Wilh. Lambrecht). Later, a study of the associated flora in the plots
was made.

RESULTS AND DISCUSSION

Effect of biotic and abiotic factors on the frequency and development
of Suillus luteus.

Abiotic factors

Rainfall. This in an important factor in the growth of the carpo-
phores since it is converted directly into soil moisture. The fact that rain-
fall represents an essential factor in the growth of the carpophores is
shown in graphs 1, 2 and 3. It is evident that the abnormal drought that
affected the region during the fall of 1979 caused a delay and alteration
in the formation of carpophores. On the other hand, the normal rainfall
distribution in the region during 1980 produced a phenogram, frequency
and crops of Suillus luteus that appear to be nearer to the normal fruc-
tification of this fungus.

Rainy season (April-September). lt could be concluded from the
studies completed that fall is the most important season for carpophore
growth due to the high amount of rainfall (43% of the annual total)
registered. The absolute minimum temperatures registered in fall were
relatively ( 2 to 119 C for the different localities), facilitating fructifica-
tion. In winter a large amount of rainfall was also registered (38-40% ot
the annual total), but the effects of low temperatures produced an inte-
rruption in fructification. Since it was the site most distant from the
Ocean, Monte Aguila was the area most affected by low temperatures
(-22C absolute minimum temperature). On the other hand, the localities
of Loma Colorada and Chaimávida, which are close to the Ocean, showed
a mean temperature of 11.5%C and only occasionally registered minimum
absolute temperatures under 0%C for the season.'

Dry season (October-March). In spring, especialy during October
due to the effects of rainfall (34 mm in Chaimávida and 14 mm in Loma
Colorada?, and the higher absolute minimum temperatures (2 to 16%C),
a reactivation in the fructification of S. luteus and pioneer mycorrhizal
species was produced. This reactivation occurred especially in open grassy
forests (with runing and/or thinning) and preferably located on clay soils.
The south wind and relatively higher temperatures produced a dryimg
effect which put a quick halt to the fruiting process.

1In these localities minimum temperatures under the litter of -—0.52 (C in August were occasionally
registered.

2Normal rainfall for Concepción: 66.6 mm.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 93

Light. An important role in the fruiting of some mycorrhizal
species (Slankis 1971; Khan 1972; Manachere 1978), seems to be played by
UV light. This condition would explain the absence of $. luteus in closed
forests (non-pruned and/or non-—thinned), due to the presence of an
almost permanent twilight (107.29 — 158.59 u-einsteins m” seg”). In open
forests where S. luteus is abundant, values of 2425.1 u—einsteins m”? seg”
during the day with 10/10 overcast sky and 3171.54 u—einsteins m” seg”
on a clear day were registered.*

Wind. Due to the tremendous drying effect on the carpophores
and surrounding habitat, the wind inhibited the fructification of $. luteus
and other macroagaricales (especially during August to October with the
south wind)?. Zinke (1962) reported that the wind influence on the
distribution of needles, debris and branchs altering the soil characteristics
is important. The needles and debris are located near the bases of trees;
the branches, on the other hand, are found circling the tree forming a
concentric ring where it is very common to find $. luteus. All of these
factors affect the distribution of S. luteus.

High temperatures. The highest temperatures were registered
during the dry season (October-March). This dryness inhibited the fruc-
tification of $. luteus in spite of the fact that high temperatures are favo-
rable to the appearance of the carpophores (Binyamini, 1980) and mycor-
rhizal activity (Theodorou and Bowen, 1971). Nonetheless, occasional rains
registered in summer caused the fructification of S. luteus in clay soil
(Chaimávida locality). These carpophores were more voluminous and of
a better quality than the fall carpophores. The optium growth of $. luteus
occurred in fall, since the maximum rainfall was registered during this
season (43% of annual total). The mean temperatures oscillated between
11 to 14%C in the different localities and the soil absolute maximum tem-
peratures varied from 12 to 26%C in Loma Colorada, 9.5 to 27%C in Chai-
mávida and 7 to 17%C in Monte Aguila.

Low temperatures. The low winter temperatures (soil minimum
absolute -0.52C in Chaimávida and Loma Colorada, and -2%C in Monte
Aguila), have detrimental effects on the appearance of 5. luteus and other
mycorrhizal fungi (Russula, Amanita) producing the rupture of the car-
pophores and an interrupcion of mycelial activity.

Soil moisture. The soil moisture is closely related to the soil type
and the amount of rainfall registered. In sandy soil S. luteus was absent
from October to April due to the low soil moisture, since these soils are
very permeable. The clay soil, with greater capacity of retention of water,
allows the appearance of S. luteus during the dry season after a 34 day
period of rain. This actually occurred in summer 1980 in Chaimávida,

1These measurements represent extreme values registered from March 1979 until August 1979.
2Values of 0,2 — 1,5 km/hr in non pruned forests and 0,5 — 9 km/hr in pruned forests, and 0,4 — 20

km/hr in pruned and thinned forests were registered, in the different stands.

94 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

where the rainfall registered caused S. luteus, Tricholoma fagnan:, Lacta-
rius deliciosus and Russula sardonia to appear.

These species grow more quickly than in autum because of the
high temperatures. The good quality of the fungus would lead one to
suggest emphasizing a summer production of S. luteus through artificial
Irrigation in clay soils.*

Soil pH. "The pH in Pinus radiata forests oscillates (see graphs
1, 2, 3), but there is a tendency towards acidity of pH 4-6, which is optimal
for the growth of Agaricales (Bohus and Babos, 1960; Theodorou and
Bowen, 1969; Manachere, 1978). The fine debris near the base of the
trees is more acidic (pH 4.30 to 5.20) than in the periphery (pH 5.40 to
6.30) where large branches and larger debris predominate. These pH
values are relatively constant under normal rainfall conditions, but in
the dry season the soil pH tends to be higher (especially in the case of
sandy soil where it may reach pH 8). The higher pH decreases myco-
rrhizal activity (Theodorou and Bowen, 1969; Bowen and Theodorou,
1973) and would favor bacterial and animal activity (Manachere, 1978).

Biotic factors

Pine plantations

Age. Arboreal foliage plays an important role in the transmis-
sion of electromagnetic radiation (Odum, 1972). The foliage prevents
(according to the age and management of the forests) the transmission of
light and heat to the floor. In closed plantations S. luteus and other my-
cepa fungi are non-existent, probably because of the absence of UV
light.

Density. The arboreal density has an identical effect as does age
on the density and growth of S. luteus due to the arboreal cover effect.
S. luteus seems to have a maximum crop in forests of 5 to 20 years with
a density of 2,500 to 800 trees/ha, respectively.

Pruning and thinning. "These practices are important in mature
forests because they increase the crop of S. luteus. Grops of this fungus and
other ectomycorrhizal macroagaricales are low in forests not subjected to
these management practices. Mycorrhizal Cortinariaceae such as Cortima-
rius, Inocybe and Astrosporina were dominant in pine stands which were
neither pruned nor thinned.

Flora in the plots. In plantings with a poor herbaceous stratum
mixed with blackberry (see appendix), an important increase in the crop
of S. luteus was produced. In addition, in forests with Rubus ulmifolius

1In summer, young carpophores of S. luteus (velum enclosed) as much as 10 cm in diam. pileus, absence
of parasite and with a more pleasant smell and odor similar to Boletus edulis L. ex Fr.

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1.- Crop and density of Suillus luteus ea

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(March 1979 — June 1980)

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2.-Crop and density of Suillus luteys a
vs. abiotic factors in Chaimávida
(March 1979-June 1980)

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3.- Crop and density of Suillus luteus

(1)

vs, Gbiotic factors in Monte Aguila

(March 1979 - June 1980)

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 95

and/or R. constrictus it is easy to find early and later carpophores of
S. luteus. "This is probably due to the greater humidity conserved by the
scrub cover. Also, in stands with a good development of a herbaceous
stratum, a decrease in the crop of S. luteus and other mycorrhizal fungi
is produced. Spores may arrive, but grass roots may inhibit germination
(Bowen and Theodorou, 1973). Malajczuk and Lamont (1981) show that
certain grasses, which are endotrophic, are toxic to ectomycorrhizal fungi.

Other fungi, the saprophytic fungi Mycena pseudoalnicola Sing.
and Collybia subhybrida Sing., seem to play an important role in the
appearance of S. luteus. “These saprophytic fungi fruit in patches with
the first rains. Later on S. luteus grows abundantly in these patches.

Anthropogenic and domestic animals action. In addition to the
effects of pruning and thinning, man and domestic animals, especially
cattle, hogs, and horses play an important role when they trample and
generally disturb the litter or soils. “These actions alter or injure the gro-
wing carpophores or mycelia. “These alterations produce a reduction in
the density and growth of Suillus, which may oscillate im extreme cases
between 60 to 100% since this fungus prefers non—disturbed ecosystems
(Slipp and Snell, 1944).

CONCLUSIONS AND RECOMMENDATIONS

The optimal season for collection of S. luteus in the Bío - Bío
area is April to June at the onset of persistent rainfall (see graphs 1, 2,
3 and table 1).

Monte Aguila was the locality with the greatest crop (more than
1,200 Kg/ha/season 1980).

Chaimávida also presented a large crop (approximately 1,000
Kg/ha/season 1980). In this locality the crop was havested os
most of the year.

Loma Colorada presented the smallest crop of the 3 localities
(152 Kg/ha/season 1980).

In sandy soils the collection can be made only until October.

In open forests (those pruned or thinned) located in clay soils
(1. e. Chaimávida) with Rubus ulmifolius and/or R. constrictus it is possi-
ble to collect Suillus luteus in summer after a more or less intense rain-
fall.

In winter $. luteus is absent due to low temperatures and great
rainfall, but other mycorrhizal macroagaricales more adapted to these con-
ditions are dominant.

The greatest S. luteus crop was observed in young nonpruned
stands up to 10 years of age and in pruned and thinned stands up to 20
years of age.

The collection must always be carried out along permanent
paths in order to reduce the injury to carpophores or the mycelium.

S. luteus is a dominant species in non—disturbed habitats.

S. luteus crop may be increased by irrigation in stands located
in clay soils.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983. 97

ACKNOWLEDGEMENTS

This work was supported by the Vicerrectoría de Investigación,
Universidad de Concepción, Grant, 2.08.89. The authors would like to
thank Dr. J. Sullivan for the manuscript correction, Mr. E. Riquelme for
his technical assistence and Miss E. Solar for the manuscript typing. Also
we are greatful with the following institutions: Forestal Mininco, Corpo-
ración Nacional Forestal de Chile (CONAF) and CIDERE Bío - Bío.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. - 99

APPENDIX .

Floral Composition in the plots 100

A

l. Trees A Lomas Chaimá- Monte
Colorada vida Aguila

A: Aristotelia chilensis (Mol.) Stuntz

Crytocarya alba (Mol.) Looser
- Luma aficulata (DC.) Burret

Nothofagus obliqua (Mirbel) Oerst.

Peumus boldus Mol. Da
-. Sophora macrocarpa J. E. Sm. ]

IL. Pinus radiata D. Don | XxX
Populus nigra L..cv. Italica 2

AA
A

>

Shrubs

A: Baccharis linearis (R. et P.) Pers.

- Baccharis racemosa (R. et P.) DC.
Berberis trigona Kunze et P. et E.
Chusquea sp.

Margyricarpus Pinnatus (Lam.) O. K.
Ribes punctatum R. et P.
Schinus polygamus (Cav.) Cabr.

e

TI: Lupinus arboreus Sims
Rosa eglanteria L.
Rubus constrictus P. J. Muell. et
Lefevre E
Rubus ulmifolius Schott
Teline monspessulana (L.) C. Koch

E E

AS
Pe

3. Herbs

Dicotyledons

A: Acaena argentea R. et P.

-= Conyza chilensis Spreng.
Gerantum berterianum Colla
Geranium commutatum Steud.
Oenothera stricta Ledeb. ex Link

Ad

I:_Anthemis arvensis L.

* Cirsium vulgare (Savi) Tenore
Crepis capillaris (L.) Wallr.
Daucus carota L.

EIA
4
>

100 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Lomas Chaimá- Monte
Colorada vida Aguila

Echium vulgare L. XxX Xx

Hypericum perforatum L. X XxX

HyPochaeris glabra L. Xx

Hoypochaeris radicata L. XxX

Lactuca serriola L. Xx

Linum usitatissimum L.

Lobeliía tupa L.

Ornithopus compressus L.

Petrorhagia prolifera (L.) P. W.
Ball et Heyw.

Plantago lanceolata L.

Prunella vulgaris L.

Rumex acetosella L.

Rumex conglomeratus Murr.

Sanguisorba minor Scop.

Senecio vulgaris L.

Silene gallica L.

Sonchus asper (L.) J. Hill

Trifolium arvense L.

Verbascum virgatum Stokes

Verbena bonariensis L.

A ARA AA AA AAA
NS

Ps
A

M onocotyledons

A: Alstroemeria sp. XxX
Bomarea salsilla (L.) Herb. >:

A: Chascolytrum subaristatum (Lam.)
A. N. Desv. Xx
Dioscorea reticulata Gay XxX
Herbertia lahue (Mol.) Goldbl.
Hippeastrum chilense (L'Hérit.)
Baker
Nassella exserta Phil. XxX
Piptochaetium montevidense (Spreng.)
Parodi
Piptochaetium sp. Xx
Sporobolus poiretii (Roem. et Schult.)
y UEltch: X
Stipa filiculmis Del.
Stipa poepPigiana Trin. et Rupr.

PA

I: Agrostis sp.
Aira caryophyllea L.
Avena fatua L.
Bromus mollis L.
Briza maxima L.

AMA A A
ES

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 101

Lomas Chaimá- Monte
Colorada vida Aguila
Cynosurus echinatus L. Xx XxX
Cyperus laetus Presl. Xx
Cyperus vegetus Willd. Xx
Holcus lanatus L. X XxX
Imperata sp. X
Lagurus ovatus L. Xx
Paspalum dilatatum Poir. Xx
4. Climbers
A: Cissus striata R. et P. Xx
Muehlenbeckia hastulata (J. E. Sm.)
Johnst. X X
5. Cryptogams
A: Adiantum chilense Kaulf. XxX
A: Blechnum hastatum Kaulf. X
1: Mosses Xx Xx
A: Natural I: Introduced

:-__MAMMMMMM514141414%4+= ==)

lao

lerlenlala Gay
Maine (Mol) Golábl.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 105-115, 1983. 103

ESPERMATOGENESIS EN LA RANA CHILENA CAUDIVERBERA
CAUDIVERBERA (LINNE, 1758) (ANURA, LEPTODACTYLIDAE)*

Spermatogenesis in the Chilean Frog Caudiwverbera caudiverbera (Linne,
1758) (Anura, Leptodactylidae)

IVONNE HERMOSILLA B.**; ANGELICA URBINA P. y JUAN C. CABRERA P.

RESUMEN

Se analiza a la microscopía de luz la espermatogénesis en C. caudiverbera, ca-
racterizando los diferentes elementos celulares desde las células germinales primordiales
(CGP) a espermatozoides. Las CGP asociadas a células foliculares, aparecen como las
células de mayor tamaño (18-30 um) y de núcleo altamente lobulado. Estados como
espermatogonias 1 y Il; espermatocitos primarios y secundarios y espermátidas tem-
pranas se encierran en una organización cística constituida por una membrana fibrosa
que mantiene en su ¡interior a grupos de células sincronizadas en cuanto a prolifera-
cin y diferenciación. Las espermátidas tardías abandonan el cisto y se embeben en las
células de Sértoli donde finalizan su transformación a espermatozoides, éstos liberados
al lumen tubular presentan una cabeza alargada de 80 um y un flagelo de aproxima-
damente 200um.

ABSTRACT

The different cellular elements from primordial germ cells (PGC) to sper-
matozoa, during spermatogenesis in C. caudiverbera where characterized by ligth micros-
copy studies.

The PGC, associated to follicular cells, are the mayor in size (18-30 um) and
present a highly lobulated nucleus. Spermatogonio 1 and II, primary and secondary
spermatocytes and early spermatids are seen inside a cystic organization surrounded
by a fibrous membrane. The cistic cells are synchronized in proliferation and diffe-
rentiation. The late spermatids leave the cysts and entering in close relationships
with the Sertoli cells become spermatozoa, they are released into the tubular lumen.
The sperm has an elongated head 80 um and a flagelum 200 um of lenght.

Keywords: Anura. Leptodactylidae. Spermiogenesis. Histology.
*Proyecto 20.31.03 Dirección de Investigación. Universidad de Concepción.

**Laboratorio Biología del Desarrollo. Depto. de Biología Molecular. Facultad de Ciencias Biológicas y de
Recursos Naturales, Casilla 2407, Universidad de Concepción, Chile.

104 - Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

INTRODUCCION

Aspectos de la dinámica espermatogénica en anfibios han sido
estudiados en varios grupos de anuros y urodelos. (Lofts, 1974). "Trabajos
utilizando especies distribuidas en territorio chileno no han merecido
atención en este sentido, exceptuando dos realizados en Bufo spinulosus
Wiegmann (Bustos, 1963; Bustos y Cubillos, 1967). En el primero se define
el origen de las membranas celulares en cortes ultrafinos, considerando
las etapas tempranas de la espermatogénesis; en el segundo trabajo, los
autores establecen la dinámica particular exhibida por elementos germinales
tempranos durante su ciclo celular. Estos estudios permiten resolver pro-
blemas en torno a la cinética y diferenciación de elementos espermato-
génicos muy precisos dentro de la espermatogénesis. Análisis de esta natu-
raleza como aquellos que caracterizan variaciones estacionales normales
o bajo condiciones alteradas requieren de la definición histológica que
permite reconocer la heterogeneidad celular de la población espermato-
génica. Por otro lado especies como nuestra rana chilena, ofrece una
excelente oportunidad para aumentar información no sólo en su biología
sino en resolver algunas controversias especificas en torno a la esperma-
togénesis en Anura (Poirier y Spink, 1971; Reed y Stanley, 1972; Lofts,
1974). La presente comunicación describe las características histológicas
del testículo y sus elementos germinales en C. caudiverbera, desde los
estados de células germinales primordiales (CGP) hasta el espermatozoide
liberado al lúmen tubular, utilizando la microscopía de luz.

MATERIALES Y METODOS

Machos maduros de C. caudiverbera recolectados durante la época
de primavera en regiones cercanas a Concepción (36%45'S; 72225"W), Chile,
y posteriormente, mantenidos en piletas al aire libre en condiciones cer-
canas a las naturales en cuanto a alimentación, fotoperíodo y temperatura,
fueron anestesiados por hipotermia y éter.

Disecados los testículos, éstos fueron fijados en Bouin deshidra-
tados y aclarados en alcohol y dioxano, infiltrados en parafina y cortados
a 7 um. Los cortes fueron teñidos con hematoxilina de Mayer y contra-
rrestados en floxina. Todos los testículos fueron procesados íntegros, es
decir, incluyendo totalmente la región craneal, medial y caudal. Obser-
vaciones de espermatozoides maduros se obtuvieron realizando fragmen-
tación de trozos de testículos y suspensión de las células en Ringer de
anfibios pH 7.2, posteriormente, centrifugados y resuspendidos varias
veces para teñirlos utilizando como colorante una solución Leifson modi-
ficada.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 105

RESULTADOS

El macho de C. caudiverbera presenta los testículos permanente-
mente ubicados en la cavidad abdominal del cuerpo, éstos corresponden
a dos estructuras ovoides rodeados por una cubierta elástica y fibrosa, la
túnica albugínea. Se encuentran conectados al mesonefros por un corto
mesorquio a través del cual pasan los vasos eferentes.

En la gónada externamente se puede diferenciar 3 regiones: la
craneal, ubicada anteriormente y conectada con los cuerpos grasos, la me-
dial y posteriormente la región caudal (Fig. 1).

Fig. 1.- Testículo (T') y Cuerpos Grasos (CG). Regiones Craneal (Cr), Medial (Me) y
Caudal (Ca).

Al cortar transversalmente la gónada quedan expuestos los túbulos
seminíferos, delimitados por una delgada pared de tejido conectivo (Fig. 2).
No se detecta diferencia histológica en los elementos seminíferos de las
tres zonas testiculares.

En el interior de los túbulos se encuentran las células germinales,
ya sea constituyendo elementos aislados o agrupaciones de células. Los
agregados celulares pueden estar encerrados en una cápsula membranosa
conteniendo las células germinales en un mismo estado de maduración,
organización ésta denominada cisto, o embebidas en manojos en el cito-
plasma de una célula de Sértoli. Además, en el lúmen tubular es común
detectar las células más maduras del proceso espermatogénico (Fig. 3).

106 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

CELULAS GERMINALES PRIMORDIALES (CGP)

Son células aisladas ubicadas siempre en la periferia del túbulo
(Fig. 4 y 5) perfectamente detectables por su gran tamaño (18 um — 30 um),
y su núcleo altamente lobulado muy poco denso frente a la hematoxilina,
uno o dos nucleolos bastante basófilos y conspicuos pueden aparecer en
los cortes. El citoplasma granular muestra una densidad similar a la del
nucleoplasma frente a la floxina.

Cada una de estas células se encuentra rodeada por una o más
células foliculares de menor tamaño y con un núcleo alargado densamente
teñido con la hematoxilina (Fig. 4 y 5).

ESPERMATOGONIAS

Estas células constituyen grupos sincronizados de espermatogo-
nias 1 o de espermatogonias 11. Ambos agregados celulares se encierran
en una pared de células foliculares cuyos núcleos reaccionan fuertemente
a la hematoxilina; esta disposición de células foliculares en torno a las
células germinales conforma el cisto, cuyo tamaño alcanza aproximada-
mente los 20-35 um. Las espermatogonias 1 son agregaciones celulares
pequeñas (2 ó más células) con un núcleo basófilo de gran indentación
(Fig. 5 y 6) donde la cromatina muestra pequeñas áreas condensadas; los
nucleolos densamente teñidos son perfectamente detectados; el citoplasma
permanece con gran densidad granular. Las espermatogonias 11 son células
que dentro del cisto, aparecen en mayor número, su núcleo oval no es
mayor que el de las espermatogonias I y tanto la cromatina densa como
los nucleolos definen el carácter espermatogonial de estas células (Fig 6 y 7).

ESPERMATOCITOS

La maduración meiótica origina dos tipos celulares: los esperma-
tocitos primarios y los espermatocitos secundarios. Los primeros son células
con un núcleo esférico (10 um — 12.5 um) muy a fin con la hematoxilina,
contiene un nucleoplasma más denso y grumoso a la microscopía fotónica
(Fig. 7 y 8); propio de esta célula son los complejos sinaptonémicos vistos
en cortes finos (Urbina, sin publicar). Los espermatocitos secundarios
tienen un núcleo también esférico (8 um —10 um). Mucho más denso y
basófilo frente a la hematoxilina (Fig. 9). Característico de los cistos que
contienen espermatocitos, es la aparición gradual de pequeñas vacuolas
o espacios intercelulares que coalecen haciéndose más evidentes en los
cistos de espermatocitos secundarios (Fig. 8). Los cistos conteniendo esper-
matocitos miden aproximadamente 40-60 um de diámetro.

ESPERMATIDAS

Los espermatocitos secundarios al dividirse dan origen a las esper-
mátidas. Estas células se mantienen dentro de la conformación cística en
sus etapas iniciales de células pequeñas y esféricas, distribuidas periférica-
mente en el cisto al parecer por la formación de vacuolas mayores que
llenan el espacio central (Fig. 8).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 107

Fig. 2.- Corte de gónada masculina. Túnica Albugínea (TA). Pared Túbulos Seminf-
[eros (PTS). Cisto (CG) y su pared (PC). Lúmen Tubular (Ll) 3152 e

matozoides (E) en el lúmen tubular. 31.5 X.

108 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Fig. 4.- Corte a nivel de los elementos seminíferos. Células Germinales Primordiales
(CGP) adosadas a la pared tubular (PT). Células Foliculares (CF) adosadas a las CGP.
126 X.

ISS

Fig. 5.- CGP y Cistos con Espermatogonias 1 (Egl). Tejido Intersticial (TI) entre los
túbulos seminíferos. 126 X.

Bol. Soc, Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 109

SS

Fig. 6.- Cistos con Espermatogonias I (Egl) y cistos con Espermatogonias II (EglIT).
Espermátidas (Ei). 315 X,

A

Fig. 7.- Cistos con Espermatogonias 1 (Egl) y Cistos con Espermatogonias II (Egll).
Espermatozoides (E) en el lúmen tubular. 126 X.

110 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

Fig. 8.- Cistos con Espermatocitos Primarios (EcP) y cistos con Espermatocitos Secun-
darios (EcS). 126 X.

Fig. 9.- Cisto de Espermátidas Tempranas (EiT) con núcleo: esférico. Cisto de Esper-
matocitos Primarios (EcP). 126 X.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 111

Fig. 10.- Gisto con Espermátidas Avanzadas (EiA) mostrando el núcleo ovalado. Cisto
con Espermatocitos Secundarios (EcS). 126 X.

Fig. 11.- Espermátidas más avanzadas con su núcleo ya elongado (EimA). Espermátidas
Tardías (EiTa), células de Sértoli (S), núcleo de la célula de Sértoli (N). 126 X.

112 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Fig. 12.- Célula de Sértoli (S) con núcleo (N) basal, cistos con Espermatocitos Primarios
(EcP). 126 X.

a AS paa y

Fig. 13.- Espermatozoides (E) teñidos con solución Leifson; Cabeza (C); Flagelo (F).
400 X.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 113

En las etapas posteriores de espermiogénesis el núcleo esférico
aparece oval y luego elongado incrementando su afinidad por la hemato-
xilina. A mayor elongación nuclear incrementan los espacios o vacuolas
intercelulares dejando al cisto prácticamente hueco (Fig. 9).

Cuando la elongación nuclear alcanza cierto nivel y las estruc-
turas flagelares inician su diferenciación y crecimiento las paredes císticas
que dan hacia el interior del túbulo se desintegran apareciendo las esper-
mátidas tardías con los filamentos dirigidos hacia el lúmen tubular y los
núcleos alargados y en manojos embebidos en las células de Sértoli (Fig.
10 y 11). Las células de Sértoli adosadas a la pared tubular son células
de gran tamaño; su núcleo oval y basal, es relativamente basófilo. Durante
su interacción con la célula de Sértoli, el núcleo espermático se condensa
extraordinariamente y el citoplasma de la célula gamética inicia su des-
carga para conformar en definitiva al espermio maduro.

ESPERMATOZOIDES

Cuando la maduración de las espermátidas dentro del túbulo
llega a su fin, la asociación entre estas células y las células de Sértoli deja
de existir. Las células germinales son así, definitivamente, liberadas al
lúmen tubular con características citológicas que permiten identificarlos
como espermatozoides. Fn una suspensión tratada con solución Leifson
se Observa claramente, la cabeza elongada en la cual se insinúan dos cur-
vaturas siendo de mayor amplitud la ubicada más cerca del flagelo (Fig.
12). El flagelo se extiende en una longitud que es, aproximadamente, dos
a tres veces la de la cabeza que alcanza los 80 um.

DISCUSION

El presente trabajo permite asegurar que la histología en los
testículos de C. caudiverbera muestra el modelo típico de los anuros. Los
testículos similares a los otros anfibios están rodeados por una túnica
albugínea. Septos de tejido conectivo conforman la pared tubular;
entre los túbulos se distribuye escasamente el tejido intersticial rico
en tejido conectivo, células de Leydig y elementos sanguíneos (Fig. 3).
Los túbulos seminiferos contienen las células germinales ya sea adosadas
directa o indirectamente a la pared tubular. Las células más inmaduras
o CGP son de fácil reconocimiento por su gran tamaño y su núcleo
eosinófilo. Su íntima relación a las células foliculares que las rodean
sugiere una interacción temprana entre éstas y los elementos germi-
nales (Fig. 4 y 5). En el siguiente estado de maduración o espermato-
gonias el núcleo multilobulado de las CGP se hace más regular indicando
su proximidad a la división celular (Al-Mukhtar y Webb, 1971); estas
células constituyen grupos sincronizados y separados de otros estados por
células foliculares que se disponen constituyendo la envoltura cística.

Esta misma conformación folicular continuará en torno a los estados de
espermatocitos, donde ocurrirán procesos tan importantes como los meió-

114 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 54, 1983.

ticos (Lofts, 1974), y en los estados de espermátidas tempranas, que mues-
tran las etapas iniciales de la conformación diferencial de la célula esper:
mática, con respecto a los cambios del núcleo o de la vesícula acrosomal
y del flagelo (Monesi, 1972).

Finalmente, las espermátidas tardías pasan de la organización
cística a incorporarse al citoplasma de una célula folicular que por procesos
diferenciativos (Lofts, 1974), constituye la célula de Sértoli, muy conspicua
dentro de los túbulos seminíferos, esta célula de núcleo basal mantiene
a las espermátidas tardías en manojos embebidas en su citoplasma antes de
ser liberadas definitivamente al lúmen tubular (Fig. 10 y 11).

El origen de la línea germinal espermatogénica en C. caudiwverbera
a partir de las CGP y su continuidad a través de las espermatogonias,
espermatocitos, espermátidas y espermatozoides, es la consecuencia lógica
de los procesos de diferenciación celular de estas células. Observado la
posición y distribución de estas células a través de la diferenciación, se ha
encontrado que si bien las CGP se mantienen en las paredes tubulares
y los espermatozoides en el lúmen tubular, el resto de la estirpe germinal
no sigue un orden de distribución que permita asimilarlo a la secuencia
establecida para el caso de los mamíferos donde hay una distribución re-
gular desde las paredes tubulares hacia el lúmen de los túbulos, esto no
parece ocurrir para la especie estudiada como también para otras especies
de anfibios (Atherton, 1974; Lofts, 1974). Los estados intermedios entre
CGP y espermatozoides, que se encierran en cistos donde las células sin-
crónicamente, sobrellevan cambios proliferativos meióticos y diferencia-
tivos, parece indicar una compartamentalización necesaria en este tipo de
testículo que mantiene siempre el lúmen tubular con espermatozoides
ya sea durante el tiempo de actividad sexual como lejos de éste. (Hermo-
silla, Cabrera y Urbina, sin publicar).

Las observaciones descritas en esta comunicación destacan a gran-
des rasgos los tipos celulares que se suceden en la espermatogénesis de
Caudiverbera, ello servirá como referencia valiosa para iniciar el estudio
de los cambios ultraestructurales de la espermatogénesis en esta especie,
como también el análisis de la onda espermatogénica de la especie tanto
en los meses deinvierno como de verano.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 54, 1983. 115

BIBLIOGRAFIA

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 117-124, 1983. 117

CAMBIOS DE EXCITABILIDAD MUSCULAR EN RATAS
SOMETIDAS A SHOCK POR TORNIQUETE

Muscular excitability changes in rats under tourniquet schock

RODRIGO ITURRIAGA, HERNAN CARDENAS y LADISLAO QUEVEDO*

RESUMEN

Se estudiaron cronaxia, reobase y los índices de acomodación (I.A.), aplicando
estímulos rectangulares y de ascenso expotencial a músculos brachioradialis de ratas
controles, ratas curarizadas y ratas sometidas a cinco horas de torniquete bilaterales
(5Tbi) en las extremidades posteriores. No hubo diferencias significativas en los valores
de reobase, 1.A. y cronaxia obtenidos en ratas curarizadas con respecto a los controles.
Se obtuvieron valores similares de reobase y cronaxia entre ratas 5Tbi y las ratas
controles.

A la hora de retirar los torniquetes los IA. musculares presentaron un
aumento altamente significativo (p<<0.001) con respecto a los controles, alcanzando
su máximo valor a las dos horas. A partir de este tiempo este aumento se mantuvo
durante el resto de los experimentos.

ABSTRACT

The reobase, chronaxie and muscular accommodation indexes (1.A.) were
studied. These experiments were made by applying rectangular and exponential
rising current to brachioradialis muscles of control rats, curarized rats submitted to
five hours of bilateral hind limb tourniquet. There were not significant differences in
the values of chronaxie, reobase and 1.A. of the curarized rats relative to the control
group.

Rats submitted to five hours of bilateral hind limb tourniquet showed similar
values of chronaxie and reobase.

An hour after tourniquet release, the muscular 1.A. showed a highly signi-
ficant increase (p<<0.001) relative to the control group, reaching their maximun
values at two hours. These high values of the muscular A.I. were kept throughout
the rest of the time course of the experiments.

Keywords: Muscular physiology. Schock reactions.

*Departamento de Ciencias Fisiológicas. Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales. Univer-
sidad de Concepción. Casilla 2407, Apartado 10. Concepción, Chile. Financiado por Proyecto D.I. de la
Universidad de Concepción N?* 20.33.02.

118 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

INTRODUCCION

Existen diferentes métodos experimentales para producir shock
en animales de laboratorio, entre estos hemos escogido el modelo de shock
por torniquete descrito por Rosenthal (1943), en el cual el tiempo de
aplicación de las ligaduras determina el porcentaje de mortalidad. Con
una o dos horas de aplicación la mortalidad es de 0% y con cinco horas de
aplicación de las ligaduras la mortalidad aumenta al 100% en la rata, Sáez
(1981).

Después de retirar a las ligaduras en la rata se ha encontrado
un aumento significativo de la potasemia y del hematocrito Rosenthal
et al. (1954), disminución del flujo sanguíneo total y aumento de la resis-
tencia periférica total (Takács et al. 1962). En músculos de rata some-
tidos a isquenia por torniquete se describió un aumento de la permea-
bilidad de las membranas a enzimas (Sáez et al. 1982), a potasio, sodio y
agua (Rosenthal 1954). Los cambios en las concentraciones iónicas e in-
greso de agua se deben a alteraciones en las propiedades de las membranas
y no solamente ocurren en áreas injuriadas primariamente por la isquemia,
sino que se encuentran en zonas distantes como resultado de la hipoxia
producida por la reducción del flujo sanguíneo (Levenson et al. 1961).

En las membranas de conducción es donde se manifiestan a me-
nudo cambios prematuros debido a alteraciones en la homeostasis, lo cual
puede conducir a variaciones en parámetros de excitabilidad. Entre éstos
la acomodación ha resultado ser la más sensible a alteraciones patológicas
y farmacológicas de las membranas excitables (Aguayo et al. 1981); (Que-
vedo et al. 1978) y Vivaldi et al. (1965). Acomodación se define como el
aumento de umbral al ser estimuladas las membranas con corrientes de
larga duración y ascenso lento (Quevedo et al. 1978).

Los valores de acomodación en fibras mielínicas de Xenopus
laevis han sido relacionados con modificaciones en los mecanismos de inac-
tivación de la conductancia del sodio (Frankenhaeuser et al. 1965).

En animales en shock, el registro de potenciales de membrana
de fibras musculares ha sido usado como un método directo para evaluar
cambios del estado funcional de las células musculares, encontrándose
disminución progresiva de los potenciales de membrana durante el curso
del shock (Jennische et al. 1978). En motoneuronas de ratas ha sido rela-
cionado aumento de valores de acomodación con reducción del flujo san-
guíneo y con disminución de los potenciales de membrana (Bradley et
al. 1961). |

El objetivo de este trabajo fue estudiar los cambios de excitabi-
lidad en músculos brachioradialis en ratas después de haber sido some-
tidas a cinco horas de torniquetes bilaterales en las extremidades poste-
riores.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 119

MATERIALES Y METODOS

En los experimentos se usaron ratas albimas Sprague-Dawle de
ambos sexos que pesaron entre 250-350 g. En las manipulaciones quirúr-
gicas y en las medidas electrofisiológicas los animales fueron anestesiados
con éter etílico. Al comienzo de los experimentos se administró por vía
intramuscular Ampicilina (100 m/g kg), que se repitió cada seis horas
para prevenir bacteremia. Durante el curso de los experimentos no se
suministró agua ni alimentos a las ratas. La temperatura ambiental se
mantuvo entre 20-249C.

1.- METODO EXPERIMENTAL PARA PRODUCIR SHOCK.

Se colocaron torniquetes en las dos extremidades posteriores,
los cuales fueron retirados después de cinco horas. Las ligaduras se hicie-
ron de bandas de caucho de 1 cm de ancho por 1-2 mm de grosor que se
aplicaron bajo la piel en la región de las articulaciones coxo—femoralis.

2. MEDICIONES ELECTROFISIOLOGICAS EN MUSCULOS BRACHIORADIALIS

Las medidas de reobase, cronaxia fueron realizadas en músculos
brachioradialis, practicándose en la piel una incisión de 1-2 cm de largo,
para exponer los músculos. Se retiró parte del tejido conjuntivo y facie
que cubre los músculos, humectándolos con “Tyrode a pH 7.35 y a37*C
antes de efectuar las medidas.

Con el objeto de determinar si la respuesta muscular era causada
por estimulación directa de las fibras musculares O a través de puntos
motores, se estudiaron los mismos parámetros de excitabilidad en ratas
curarizadas con cloruro de d-—tubocurarina (2mg/kg). En estos casos la
respiración fue mantenida conectando a la traquea de los animales una
bomba de respiración artificial V 5 kg Narco Biosystem. La frecuencia
cardiaca se controló en un Audio Monitor Grass AM 7. La temperatura
rectal fue medida periódicamente y se mantuvo a 37%C. con ayuda de
una fuente calórica.

3.- ACOMODACION

Para medir acomodación se usaron electrodos bipolares colocados
sobre la superficie de los músculos, usando pulsos rectangulares reobásicos
y de ascenso exponencial, con frecuencia de un pulso por segundo.

La mínima contracción muscular visible fue tomada como res-
puesta umbral. Los resultados obtenidos con este método son consistentes
con los obtenidos al registrar la respuesta con electromiografía. Los pulsos
rectangulares fueron generados por un estimulador Grass Sy, conectado a
una unidad de aislación Grass SIU5 A. Los pulsos de ascenso exponencial
fueron obtenidos al conectar el sistema de estimulación con un circuito
desistivo-capacitativo (RC) en seirie, obteniendo constantes de tiempo de
20, 40, 60 y 80 ms.

Los resultados son expresados como índices de acomodación (1.A.)
según Gunther et al. (1965), y Quevedo et al. (1978), y fueron medidos
en ratas controles y curarizadas y en ratas con 5 horas de torniquete (5'T'bi)
durante el tiempo en que las ligaduras estuvieron colocadas y hasta doce
horas después de retirarlas. Los resultados obtenidos en los grupos expe-
rimentales se contrastaron con los del grupo control con el test t de Student.

120 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

RESULTADOS

1.- MEDIDAS ELECTROFISIOLOGICAS EN RATAS CURARIZADAS.

Los valores de umbrales reobásicos y cronaxia obtenidos en ratas
curarizadas con respecto a los controles, no presentaron diferencias signi-
ficativas. Los valores de los 1.A. son similares en ratas curarizadas y en
controles. Las curvas de acomodación exhiben en ambos casos un cambio
de pendiente en la constante de tiempo de 40ms.

2.- REOBASE, CRONAXIA EN RATAS EN SHOCK

Los valores de los parámetros de excitabilidad, medidos en mús-
culos brachioradialis, de cronaxia y reobase no fueron estadísticamente,
diferentes en los animales del grupo experimental con respecto a los con-
troles, en ambos casos la reobase presentó valores entre 2-3 volt y los valores
de cronaxia oscilaron entre 0.05-0.12 ms.

3.- ACOMODACION EN MUSCULOS BRACHIORADIALIS DE RATAS EN SHOCK

Las medidas de acomodación realizadas antes de retirar los tor-
niquetes muestran valores de los 1.A. similares a los controles (Fig. 1).
Un aumento altamente significativo (p<0.001) fue encontrado desde la
primera hora después de retirar los torniquetes en todos los índices estu-
diados (Fig. 2, Tabla 1).

IlA20 a Controles Remoción
a 5 Tbi

torniquete

1.30

1.20

-2 -1 0 1 2 3 d
TIEMPO (horas)

Fig. 1.- Comportamiento del índice de acomodación al aplicar corriente exponencial
de 20 ms de constante de tiempo (LA. 20) antes y después de retirar los torniquetes.
Los tiempos negativos corresponden a medidas realizadas antes de retirar los torni-
quetes. 5Tbi ¡indica que las ratas fueron sometidas a 5 horas de torniquete bilateral
de sus extremidades posteriores. Los valores graficados representan en esta figura y
en las siguientes los valores promedio y el error standard (*p<<0.001).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 121

p—o Controles R emoción
o—oy 5 Tbi torniquete

1ES

1.4

1.3
1.2

1.1

1.0 GERENA TEE
0 1 2 3 4 5 6 12

TIEMPO ( horas )

Fig. 2.- Comportamiento del LA.,, en el tiempo, después de retirar los torniquetes.
Se observó un aumento altamente significativo (p<<0.001) del índice de acomodación
muscular I.A.,, desde una hora después de retirar las ligaduras, este aumento llega a
su máximo valor a las dos horas y permanece alto las doce horas del registro (*p<
0.001), 5T'bi indica valores de I.A. obtenidos en ratas sometidas a 5 horas de torni-
quete.

TABLA Ll

VALORES DE LOS INDICES DE ACOMODACION MUSCULAR IAE
MEDIDOS EN RATAS SOMETIDAS A CINCO HORAS DE TORNIQUETE.

Tiempo de medida después de retirar los torniquetes (horas)

0 1 9 6
A > —_ o ——_——_————_—_———_-———552
Control 1.14-0.01(18) — 1.13+-0.01(13) — 1.18-0.01(13) 1.120.02(13)
1.A..y Torniquete 1.14+4-0.02(22) 1.17-0.01(22) 1.21-+0.02(18) 1.22+0.01(16)
' N. S »
ES ES

Control 1.36-+0.01(13) 1.35+0.01(13) 1.34-+0.02(13) 1.85-+0.02(13)
LA.) Torniquete 1.86+-0.02(22) 1.54+-0.03(22) 1.62=-0.04(18) 1.64-+0.04(18)
Ed E de

N. S.
_— __ _ _ _ _————— —_— _ —___ _ —____ —A A A A A A
(n): Número de músculos medidos.
e Probabilidad altamente significativa (p<0.001).

N.S.: Probabilidad no significativa (p>>0.05).

129 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 54, 1983.

A
! e Controles
1.90 o 57Tb

1.80 -
1.70 44 |
1.60, EA

1.50 ni

1.404 6

1.30 se
1.20,

1.10

1.00
20 40. 60 80,
RC(mseg)

Fig. 3.- Curva de acomodación en ratas en shock. Curvas de acomodación muscular
de ratas controles y ratas sometidas a cinco horas de torniquete bilateral (5T'bi). Los
valores corresponden a las medidas obtenidas cuatro horas después de retirar los
torniquetes. Ordenada: I.A. Abcisas: constantes de tiempo en ms. (*p<<0.001).

Este aumento alcanza a la segunda hora su máximo valor para
estabilizarse y permanecer constante durante el curso de los. experimentos
(12 hrs.).

Los valores de los índices de acomodación 1.A.zo ea 1.A.so, para el
grupo experimental y el grupo control se muestran en la Tabla 1; los
valores obtenidos para 1.A.¿, en el grupo experimental y control se ilustra
en la Fig. 2.

La Fig. 3 ilustra la curva de acomodación obtenida cuatro horas
después de retirar los torniquetes, esta curva se compara con la curva
control obtenida a las cuatro horas. Se puede observar una ligera que-
bradura de la curva de acomodación a los 40 ms en los valores controles
y a los 20 ms en la curva de acomodación en las ratas sometidas a tor-
niquete.

“Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 123

DISCUSION

Los resultados obtenidos al estimular los músculos brachioradialis
de ratas curarizadas no muestran diferencias significativas en los 1.A., reo-
base y cronaxia con respecto a los valores encontrados en los controles.
Esto permite suponer que las respuestas observadas corresponden a acomo-
dación muscular obtenida por estimulación directa de las fibras muscu-
lares.

El aumento significativo de los 1.A. encontrado a partir de una
hora después de retirar los torniquetes (Tabla 1, Fig. 2) permite suponer
-que las membranas musculares se alteran durante el síndrome de shock.
Los mecanismos de inactivación del sodio son afectados por pequeñas
depolarizaciones, que causan incrementos en acomodación (Frankenhaeu-
ser et al. 1965), sin embargo, aunque hemos detectado disminuciones
en los potenciales de membrana de las fibras de músculos brachioradialis
dos horas después de retirar los tormiquetes, otros factores no se pueden
descartar para explicar el aumento observado. En efecto, la reducción

del flujo sanguíneo ha sido asociado con aumentos en acomodación por
Bradley et al. 1961.

CONCLUSIONES

Los resultados obtenidos al estimular músculos brachioradialis
de ratas muestran:

1... Valores de excitabilidad y acomodación similares en ratas curarizadas
y en controles, que permiten postular que las respuestas se obtuvieron
por estimulación de las fibras musculares.

2. Valores de cronaxia y reobase similares en ratas en shock por torni-
quete y en el grupo control.

3. Aumento altamente significativo (p<0.001) en los IA. musculares
a partir de una hora después de retirar los torniquetes, este aumento
alcanza su valor máximo a las dos horas y se estabiliza.

AGRADECIMIENTOS

Debemos expresar nuestros agradecimientos al Sr. Julio Vargas A.,
Laborante del Departamento de Ciencias Fisiológicas por su cooperación
y asistencia técnica en la elaboración de este trabajo.

Este trabajo fue financiado por Proyecto 20.33.02 de la Dirección
de Investigación de la Universidad de Concepción.

124 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 125-133, 1983. 125

LAS INVESTIGACIONES SOBRE LA FLORA DIATOMOLOGICA

MARINA DE CHILE: ANTECEDENTES HISTORICOS, ESTADO

ACTUAL Y PROBLEMAS RELACIONADOS CON LA TAXONOMIA
DEL GRUPO

Research on Chilean marine diatom flora: historical background, present
status and taxonomic problems

P, RIVERA R.*

RESUMEN

Hasta 1965 la información existente sobre la flora diatomológica marina de
Chile provino de las publicaciones de ¡investigadores extranjeros quienes, esporádi-
camente, analizaron algún material recolectado en el país. A partir de esta fecha
se fueron consolidando en Chile tres grupos de investigadores (en Valparaíso, Con-
cepción y Punta Arenas) quienes han publicado activamente sobre esta clase de micro-
algas.

Sin embargo, el conocimiento de esta flora es aun muy escaso, y poco exacto,
pues muchos de los taxa señalados, especialmente durante las últimas décadas, han
sido erróneamente determinados. Se considera como causales de este hecho la carencia
de literatura especializada y la no utilización de técnicas y de instrumental de inves-
tigación adecuado. La no citación del material estudiado y su no depositación en una
colección ¡institucional o privada, son errores cometidos usualmente en el país, que
impiden o dificultan posteriores revisiones.

Se señala las características generales del grupo de ficología del Departamento
de Botánica de la Universidad de Concepción, sus objetivos y las investigaciones en
desarrollo relacionadas con la clase Bacillariophyceae.

ABSTRACT

Up until 1965 scientific information about marine diatoms of Chile was to
be found in publications produced by foreign investigators, who have had only spo-
radic opportunity to examin material collected off the chilean coast.

Since 1966 this situation has been completely changed, with the establishment
of three groups of local investigators in Valparaíso, Concepción and Punta Arenas.

In spite of the prolific activity of these local scientists, knowledge about dia-
toms is still limited and, in some instances, not very reliable. In fact many of the
taxa described, particularly during the last decades, has been erroneously identified.

*Departamento de Botánica, Universidad de Concepción.

126. Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

It is assumed that lack of appropriated literature, equipment and techniques may be
responsible for misleading information. Many of the publications omit appropriate
identification of sites of collection and/or deposit of the specimens. This situation
makes it difficult or simply prevents subsequent revisions of the material described
by other authors.

This paper provides general information about the activities of phycologists
at the Department of Botany, University of Concepción, Chile, stressing the aims of
the group and describing the research projects presently underway, in particular, the
studies of the Bacillariophyceae.

Keywords: Diatoms. Marine flora. Taxonomy. Chile. Southeastern Pacific.

ANTECEDENTES HISTORICOS

Desde mediados del siglo pasado, el mundo científico empezó a
recibir información sobre las bellas y caprichosas formas de diatomeas
presentes en aguas chilenas.

Las pubicaciones de diferentes científicos extranjeros incluían,
esporádicamente, el análisis de algunas muestras recolectadas en el país.
Entre ellos debe mencionarse a F. T. Kuetzing, que en su publicación
de 1844, “Die Kieselschaligen Bacillarien oder Diatomeen”, señala varios
taxa para la Bahía de Valparaíso. La información relativa a Chile de esta
obra fue recopilada por C. Montagne y publicada en 1854 en el volumen
8 de la obra de C. Gay: “Flora de Chile”. C. G. Ehrenberg incluye tam-
bién en sus obras aparecidas en 1848 y 1856 a algún material chileno. En
la Monumental obra de A. Schmidt y colaboradores, “Atlas der Diato-
maceen—-Kunde” (1874-1959), obra fundamental para el estudio de este
grupo, se ilustra algunos taxa recolectados en Chile. G. de Toni y D.
Levi, publican en 1884 sobre material recolectado en el Estrecho de Maga-
llanes y sus alrededores; P. Petit (1889), lo hace en base a muestras Obte-
nidas en Cabo de Hornos, y P. T. Cleve analiza en 1900 material prove-
niente del Estrecho de Magallanes.

La mayoría de los trabajos anteriormente mencionados presentan
un común denominador: los autores entregan generalemente sólo listas
de los taxa encontrados, o simplemente esquemas sin hacer mayores des-
cripciones o comentarios de ellos, y usualmente, una información muy
ambigua sobre el origen de las muestras.

En los últimos cincuenta años, las publicaciones de científicos *
extranjeros, que de alguna forma contemplan material diatomológico chi-
leno, se refieren principalmente a la taxonomía de estas algas. A dife-
rericia de lo ocurrido en el siglo pasado, se entrega ahora, en la mayoría
de los casos, uma información bastante más completa sobre los taxa en-
contrados, incluyéndose descripciones, dibujos y/o fotomicrografías.

Algunos de estos trabajos se refieren sólo esporádicamente a es-
pecies que se distribuyen en la costa chilena. Son en general revisiones
de floras o de géneros, como los trabajos de F. Hustedt (1931-1966), de
H. Koerner (1970), de B. Hasle (1976), de G. Hasle y B. R. Heimdal
(1970) y de G. Fryxell y G. Hasle (1977).

En otras publicaciones se analiza el fitoplancton, o específica-
mente las diatomeas de un determinado sector del Pacífico Sur. E. Balech

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983. 127

publica en 1962 sobre el material de las expediciones Norpac y Downwind
del Instituto Scripps de Oceanografía, algunas de cuyas muestras fueron
recolectadas en aguas chilenas. G. Hasle hace en 1969 un análisis general
del fitoplancton del Pacífico Sur según muestras recolectadas por la Expe-
dición “Brategg de 1947-1948. J. Fenner y colaboradores también se
refieren en su publicación de 1976 a la composición del fitoplancton del
Pacífico Sur. Un gran aporte al conocimiento de la flora diatomológica
marina de Chile lo constituyen los trabajos de N. I. Hendey y G. Krasske.
El primero publica en 1937 sobre las muestras recolectadas por la Expedi-
ción Discovery, varias de ellas obtenidas muy cerca de nuestro litoral.
G. Krasske, en sus trabajos de 1939 y 1941, analiza las diatomeas de gran
parte del litoral, como también de aguas continentales.

Las investigaciones llevadas a cabo por científicos nacionales co-
menzaron a tomar importancia a partir de 1965. Con anterioridad a esta
fecha se conocía solamente el informe de P. Yáñez (1948), quien confec-
cionó una lista de los principales géneros de diatomeas existentes en la
Bahía de Valparaíso. En 1965 entrega S. Avaria un completo panorama
de las diatomeas de dicha bahía. El análisis de los taxa comprende des-
cripciones, comentarios y dibujos; se informa además sobre las variaciones
de abundancia relativa que ellos experimentan a través del año. En 1966
R. Meyer analiza el fitoplancton del Paso de Drake, y en 1969 P. Rivera
informa sobre las ditomeas de la Bahía de Concepción.

ESTADO ACTUAL

Existen actualmente en Chile tres grupos de investigadores que
están publicando activamente sobre diatomeas marinas, aunque con una
distinta orientación.

El primero, y más antiguo de estos grupos, lo constituye el for-
mado por S. Avaria y colaboradores en la Estación de Biología Marina de
Montemar, hoy parte de la Universidad de Valparaíso. Las publicaciones
aquí originadas se refieren a dos aspectos del fitoplancton: (1) a las varia-
ciones mensuales del fitoplancton de la Bahía de Valparaíso (Avaria 1965,
1971, 1975; Avaria y Orellana 1975: Alvial y Avaria 1981), y (2) al estudio
de diversos fenómenos de marea roja producidos tanto en la Bahía de
Valparaíso (Avaria 1970) como en otros lugares de la costa central (Avaria
1976). El grupo ha publicado esporádicamente sobre el fitoplancton de
otras zonas del litoral (Puerto Montt-Aysén, Avaria 1970), y actualmente
ha centrado su atención en el fitoplancton de la zona norte.

El segundo grupo está radicado en el Departamento de Botánica
de la Universidad de Concepción, con una orientación más taxonómica.
Sus primeras publicaciones se refieren a las diatomeas de zonas cercanas
a Concepción, y entregan descripciones, comentarios, dibujos y/o fotomi-
crigrafías de los taxa encontrados. Corresponden a los trabajos de P. Rivera
(1969) sobre las diatomeas de la Bahía de Concepción, de P. Rivera y
D. Arcos (1975) en el área de la desembocadura del río Bío Bío, de P. Ri-
vera, O. Parra y M. González (1973) sobre el fitoplancton del Estero Lenga;
de P. Rivera y H. Valdebenito (1979) sobre las diatomeas recolectadas en
las desembocaduras de los ríos Chivilingo, Laraquete y Carampangue.
En otra publicación del año 1974, informa Rivera sobre las diatomeas

128 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

epífitas en Gracilaria verrucosa recolectada a lo largo de gran parte del
litoral chileno. La orientación netamente taxonómica de este grupo se
empieza a reflejar en el trabajo de Rivera (1973) al comentar y describir
nuevos taxa para la Bahía de Concepción, carácter que se reafirma en sus
publicaciones de 1975, (sobre Amphipleura rutilans, una especie muy poco
conocida para el país), de 1979, (donde se utiliza por primera vez técnicas
de microscopía electrónica) y de 1981, al hacer la revisión de las especies
chilenas del género Thalassiostra.

Como un tercer grupo dedicado al estudio de las Bacillariophy-
ceae de Chile debe considerarse a aquél del Instituto de la Patagonia,
Punta Arenas, aunque su productividad en este campo no es muy continua.
Su orientación es similar a la de Valparaíso, es decir, (1) el estudio general
del fitoplancton, de la zona austral (Guzmán y Campodónico 1972, Lem-
beye y colaboradores 1975, 1978) y (2) estudios relacionados con discolo-
raciones y florecimientos tóxicos (Campodónico y colaboradores 1975,
Guzmán y Lembeye 1975, Guzmán y Campodónico 1978).

Aparte de estos tres grupos, otros investigadores nacionales han
publicado ocasionalmente sobre diatomeas marinas de Chile. Es el caso
de R. Meyer, que en 1970 se refiere al fitoplancton de la Operación Ocea-
nográfica Mar Chile V, de Montecino y Lopehandía (1972) sobre las dia-
tomeas predominantes del fitoplancton de la Bahía de San Antonio y de
Rodríguez, 1976, sobre mareas rojas producidas en el norte del país.

Aunque las investigaciones anteriormente mencionadas significan
un gran avance en el conocimiento de la flora diatomológica nacional,
éste es aún muy escaso. El problema se visualiza claramente en los trabajos
sobre biogeografía de este grupo de algas, por ejemplo en el de Hasle,
1976, donde se entrega una reducida información de los taxa presentes a
lo largo de la costa chilena y, en general, de toda la costa sudamericana.

PROBLEMAS RELACIONADOS CON LA TAXONOMIA DEL GRUPO

El conocimiento actual sobre los taxa que integran la flora dia-
tomológica de Chile no solamente es escaso, sino también poco exacto,
pues muchos de los taxa señalados para el país han sido erróneamente
determinados.

La correcta identificación de microorganismos exige varios pre-
rrequisitos: una buena biblioteca, una buena colección, instrumental
adecuado, etc. Desgraciadamente, estos tres elementos básicos no se en-
cuentran en todos los institutos y centros de investigación del país. Al
utilizarse una fracción de la información existente se produce indudable-
mente un desmedro en la calidad de la investigación. En varias oportu-
nidades el instrumental y los métodos utilizados han sido totalmente ina-
decuados. A menudo no se emplean técnicas de montaje adecuados para
la correcta visualización, en el microscopio fotónico, de las estructuras
silíceas del frústulos (Hyrax, Pelurax, etc.). He visto así determinar espe-
cies en un microscopio invertido Uthermóhl con el material depositado
en una cubeta de conteo. Se ha aplicado por lo tanto el criterio empleado
a comienzos de siglo, cuando la separación de los taxa se basaba princi-
palmente, en la forma de las valvas, número y forma de los cloroplastos,
etc.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 129

Con la utilización de la microscopía electrónica se ha logrado en
los últimos años un avance considerable en relación al conocimiento de
la morfología de los distintos grupos de organismos. Una serie de nuevas
características han sido descritas para el frústulo de las diatomeas, demos-
trando ser constantes, dentro de un cierto rango, para géneros y/o especies,
por lo que se las utiliza en la taxonomía moderna con un valor de fun-
damental. Indudablemente, el costo y mantención de un microscopio elec-
trónico es un carácter privativo para muchos institutos y centros de inves-
tigación. Se debe hacer notar sin embargo, que una gran parte de los carac-
teres perfectamente visibles con microscopía electrónica, también son
reconocibles en el microscopio fotónico cuando se utiliza todas sus téc-
nicas y sobre todo, cuando se sabe qué es lo que hay que observar. Induda-
blemente, para el estudio de diatomeas de reducido tamaño, como las
especies del género Minidiscus, algunas taxa del género Thalassiosira, etc.,
cuyas valvas no sobrepasan los 2 a 8 um en diámetro, el uso de estos equi-
pos electrónicos es inevitable.

Una de las condiciones básicas de toda investigación es que sus
resultados sean reproducibles, lo cual desgraciadamente, no se cumple en
muchos de los trabajos publicados en Chile sobre diatomeas. ¡Es funda-
mental que el material estudiado sea citado y depositado en un centro
de seriedad! Una colección da la posibilidad para que otros investigadores,
con mejores técnicas y equipos, mejoren y/o corrijan las descripciones
existentes, enriqueciéndose así, el conocimiento sobre nuestras especies.

EL GRUPO DE FICOLOGIA DEL DEPARTAMENTO DE BOTANICA DE LA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Con la finalidad que los grupos de jóvenes que recién se inician
en el estudio de estas interesantes algas mo cometan los errores anterior-
mente señalados, he creído conveniente indicar las características del cen-
tro de ficología del Departamento de Botánica de la Universidad de Con-
cepción. Es nuestra intención cooperar abiertamente con todos los inves-
tigadores nacionales, no sólo para mejorar el nivel de nuevos centros, sino
que también, para incorporar nuevos investigadores en el cultivo de esta
disciplina.

Entre las características generales del grupo de Concepción des-
tacan las siguientes:

DE Las especialidades de los investigadores que lo forman abarcan las prin-
cipales divisiones de microalgas, tanto marinas como dulceacuícolas.

2. Varios de sus miembros han obtenido su especialización, y posterior
grado académico, en centros europeos y americanos de prestigio inter-
nacional.

3. Desde el inicio de sus actividades el grupo volcó sus Eifetds para
contar con una adecuada bibliografía básica y especializada. Es así
como como en la actualidad la biblioteca algológica de este Departa-
mento es una de las más completas de sudamérica.

4.. Se cuenta con excelentes laboratorios de investigación. Cabe e
aquí, que a partir de 1977 se puso a disposición de los investigadores

130 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

de esta universidad un microscopio electrónico de transmisión, y en
1980, uno de barrido. Esta complementación investigador—equipos está
permitiendo realizar investigaciones de igual nivel a aquellas que se
desarrollan en grandes centros extranjeros.

5. La permanencia de investigadores de este Departamento en centros
de investigación de reconocido prestigio (Instituto de Investigaciones
Marinas de Bremerhaven, Alemania Federal; Museo Británico, Ingla-
terra; Academia de Ciencias Naturales de Filadelfia, U.S.A.; Museo
Botánico Berlin—-Dahlem, Alemania Federal, etc.), ha permitido el
trabajo directo con el material tipo depositado en dichas instituciones,
lo cual es fundamental para los estudios taxonómicos. La colección
diatomológica del Departamento de Botánica de esta Universidad
(DIAT-CONC) cuenta en la actualidad con aproximadamente 3.500
preparaciones permanentes y 2.000 muestras líquidas. Se trata prin-
cipalmente de material recolectado en el país, en diferentes años y
por distintas expediciones. La colección incluye todos los tipos de
los taxa descritos por los investigadores nacionales, como también gran

- parte del material utilizado por científicos extranjeros para su publi-
caciones sobre Chile (Hendey, 1937; Krasske, 1939 y 1941; Balech 1962;
Hasle y Heimdal, 1970, etc.). Gracias a donaciones o canje esta colec-
ción cuenta también con mumeroso material diatomológico recolec-
tado en otros Océanos.

Las investigaciones sobre diatomeas que se están llevando a cabo
en la Universidad de Concepción tienen como objetivo principal conocer
los taxa que están formando realmente parte de la microflora marina. Se
ha iniciado así la revisión de aquellos géneros que tienen una importancia
especial, ya sea por la abundancia con que se presentan sus especies, O por
su amplia distribución geográfica. Ya se mencionó anteriormente la pu-
blicación, en la colección Bibliotheca Phycologica, de la revisión del gé-
nero Thalassiosira (Rivera, 1981), con la cual se demostró la importancia
de realizar estas revisiones. Muchos taxa de este género señalados anterior-
mente para el país habían sido confundidos con otros; se amplió, además,
el conocimiento sobre su real distribución geográfica y, se demostró la pre-
sencia de ciertos taxa que no habían sido señalados aún para el Pacífico
Sur. En la actualidad se está terminando con la revisión del género Chae-
tocerOs y recientemente ha sido aprobado por la Dirección de Investigación
de esta universidad el Proyecto de Investigación “Las especies del género
Nitzschia Hassall, Sección Pseudonitzschia (Bacillariophyceae) en las aguas
marinas chilenas”. Aparte de estas revisiones de géneros se ha publicado
y se está trabajando en ciertas especies que son muy poco conocidas para
el país y/o cuya morfología no ha sido aun estudiada con las técnicas mo-
dernas de microscopía electrónica. Se publicó así el trabajo “Contribución
al conocimiento de las diatomeas chilenas. 1” (Rivera, 1979), y en Agosto
recién pasado se presentó en el Séptimo Symposium Internacional sobre
Diatomeas Recientes y Fósiles, realizado en Filadelfia, el trabajo titulado
“Contributions to the Diatom Flora of Chile. 11” (Rivera and Koch). Se
encuentra también terminada una Guía Bibliográfica y de distribución de
las Diatomeas de Chile, que comprende los 1.529 taxa de este grupo seña--
lados para el país hasta Mayo del presente año.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 131

COMENTARIO FINAL

Los problemas anteriormente presentados, relativos a la taxo-
nomía y a la metodología utilizada con los representantes de la clase Baci-
llariophyceae, constituyen en nuestro país una realidad que debe ser
modificada al más corto plazo.

El autor de estas líneas pretende solamente hacer una crítica
constructiva de cada una de las anomalías denunciadas. Se desea informar,
principalmente, a las generaciones más jóvenes de investigadores, sobre
los avances y los problemas que presentan las investigaciones nacionales
sobre este grupo de microalgas. Aún queda mucho por hacer y deberá
transcurrir largos años hasta que se conozca con exactitud los taxa que
integran esta flora. Es indudable que un mayor incremento en este cono-
cimiento será posible solamente con el esfuerzo mancomunado de los dife-
rentes grupos de trabajo.

AGRADECIMIENTOS

Deseo agradecer sinceramente al Dr. Oscar Matthei y al Dr. Oscar
Parra, Universidad de Concepción, por la revisión crítica de este manus-
crito.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 135-151, 1983. 135

CICLO REPRODUCTIVO ANUAL Y ALGUNAS CONSIDERACIONES
SOBRE LA HISTOLOGIA DEL APARATO REPRODUCTOR DE
PATIRIA CHILENSIS (LUTKEN, 1859) (ECHINODERMATA,
ASTEKROIDEA).*

Anual reproductive cycle and some observations on the reproductive
apparatus histology of Patiria chilensis (Lútken, 1859) (Echinodermata,
Asteroidea)

CAMILO L. WERLINGER I1.**

RESUMEN

Se estudian los aspectos relacionados con la biología de la reproducción de
una población intermareal de Patiria chilensis (Lútken, 1859). Las muestras obtenidas
entre Marzo de 1976 y Marzo de 1977, provinieron de Tres Morros, Bahía de Coliumo
(36931,5'S; 72057,0"W); de Lirquén (360942,0'S; 72058,3"W) y Caleta Leandro (36038,0'S;
7305,2'W), Bahía de Concepción, Chile.

El ciclo reproductivo anual es estudiado bajo los siguientes aspectos: análisis
histológico de las gónadas masculinas y femeninas, variación del coeficiente gamético
en machos y variaciones de los porcentajes de frecuencia de seis grupos de tamaño de
oocitos en hembras.

Patiria chilensis presenta a través del año un sólo ciclo reproductivo. La game-
togénesis se inicia en los machos casi simultáneamente con el comienzo del verano;
mientras que en las hembras es continua, evidenciándose mayormente a comienzos
del invierno (Junio). La postura se efectúa simultáneamente en primavera. El creci-
miento de los oocitos requiere de un período aproximado de 15 meses; existiendo,
durante parte del año, dos generaciones de células en el interior de los lóbulos ováricos.

ABSTRACT
A study on the reproductive biology of an intertidal population of Patiria
chilensis (Lútken, 1859) was carried out in three localities of the central coast of Chile:
Tres Morros (36931,5'S; 72057,0"W), Lirquén (36942,0'S; 72058,3"W) and Caleta Leandro
(36038,5'S; 7305,2'"W>). Samples were taken between March 1976 and March 1977.

* Este estudio representa parte de una memoria para optar al título de Biólogo Marino otorgado por la
Universidad de Concepción.

**Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Casilla 2407, Concepción, Chile.

136 pr st 55 Bol. Soc. -Biol Concepción, Chile. “Tomo 54; 1983.

The following aspects of the reproductive annual cycle were studied: histology
analysis of male and female gonads, changes of the gametogenic coeffient in males and
changes in percentages of frecuency of the six oocyte groups in females.

Patiria chilensis shows only one reproductive cycle per year. Male gameto-
genesis begins almost simultaneously, early in summer, whereas in females the process
is continnuous having its maximum activity early in Winter (June). Spawning in both
sexes takes place simultaneously in Spring, Growth of oocytes requires approximately
15 months, and two generations of cells occur within the ovary lobes in some periods
of the years.

Keywords: Echinodermata. Asteroidea. Reproductive cycle. Histology.

INTRODUCCION

Dentro de las diferentes clases de equinodermos los asteroideos
pueden ser considerados como formas predominantes (Caso, 1978) pre-
sentándose, en algunos casos, en forma muy abundante y evidente en áreas
expuestas a la observación. Sin embargo, la información existente, tanto
sobre aspectos biológicos como pavales parece estar restringida o ser muy
escasa para la gran mayoría de los asteroideos chilenos.

En la zona intermareal a infralitoral superior de algunas áreas
rocosas de las costas comprendidas entre la Bahía de Concepción y el
sur del Perú se encuentran abundantes ejemplares de Patiria chilensis
(Lútken, 1859), no obstante esta amplia distribución sólo se tienen algu-
nos antecedentes sobre su distribución y posición sistemática (Madsen,
1956), una nota en una guía de exploración del área intermareal (Cas-
tilla, 1975), una exposición sobre el ciclo reproductivo en una reunión
de la Sociedad de Biología de Chile (“Tesser y Avilés, 1976) y citas en
trabajos de análisis del bentos (Yáñez, 1971; Yáñez y Castillo, 1973), que-
dando en evidencia el escaso conocimiento de los aspectos biológicos de
esta especie.

Este informe es el resultado del análisis histológico del proceso
de gametogénesis de P. chilensis realizado durante el año 1976 y parte
delo TE

MATERIALES Y METODOS

Los especímenes de Patiria chilensis usados en este estudio fueron
principalmente recolectados manualmente y al azar en la zona inter-
mareal de Tres Morros, Bahía de Coliumo (36231,5'S; 72257,0"W), especial.
mente durante los períodos de baja marea. En algumas épocas del año
fue imposible obtener ejemplares del lugar antes mencionado, mues-:
treándose en forma alternativa en las cercanías de Lirquén (36%42,0'S; 722
58,3"W) o en Caleta Leandro, Península de Tumbes (36%38,5'S; (ETA OE
Bahía de Concepción.

Se efectuaron 11 muestreos durante el período comprendido entre
Marzo de 1976 y Marzo de 1977. Nueve de ellos en Tres Morros, Bahía
de Coliumo, uno en Lirquén y uno en Caleta Leandro, siendo el pro-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 137

medio muestreal de 21 individuos. En forma posterior a la recolección
se procedía a la fijación del material en una solución de formalina al
10% en agua de mar, neutralizada con bórax.

De cada una de las estrellas se extrajo un par de gónadas me-
diante una insición alrededor de cualquiera de las zonas interradiales.
Estas fueron incluidas en parafina y, posteriormente, teñidas con Hema-
toxilina y Floxina o Fosina. Los cortes, con un espesor de 7u, se efectua-
ron paralelos al eje basal de las gónadas. El análisis se realizó tanto me-
diante la observación al microscopio de las preparaciones histológicas,
como a través del estudio de microfotogratfías.

La estimación de los períodos de madurez sexual y desove se
realizó separadamente para cada sexo. Para los machos se utilizó un método
similar al usado por Holland y Holland (1969), Bay-Schmith (1980) y Bay-
Schmith et al (1980, 1981), que consiste en medir los diámetros máximos
y mínimos de la sección lobular y de la masa de espermios que ocupa
el lúmen central de los lóbulos, para calcular con estos valores un coe-
ficiente gamético (C.G.) según la siguiente relación:

Area de la masa central de espermios
(A o AAA PS ARO A TD)
Area total del lóbulo

La abundancia de espermios de cada individuo se promedia de
los coeficientes gaméticos de cuatro lóbulos circulares elegidos al azar.
A su vez, con los valores de cada ejemplar se obtiene el promedio y la
desviación estándar para cada muestra. >

En las hembras no se puede utilizar el mismo método por que
la distribución de los oocitos es uniforme en los lóbulos durante casi todo
el ciclo, siendo imposible comparar el área ocupada por los oocitos de
mayor madurez con los de menor madurez. Es por esto que en las hembras
la cuantificación se realizó mediante la micromedición de un mínimo
de 50 oocitos nucleolados por ejemplar, evaluándose siempre la totalidad
de los existentes en los lóbulos analizados. Posteriormente, se les agrupó
en clases de tamaño de 24u, graficando los porcentajes de aparición de
los grupos de tamaño considerados.

TAE TADOS

HISTOLOGIA DE LA GONADA

Estructura general

Patiria chilensis presenta 10 gónadas ubicadas de a pares en el
interior de cada una de las cavidades interradiales. Las gónadas de cada
par se encuentran muy juntas y adheridas a la pared interior del techo
abactinal. Cada una está constituida por un saco que presenta múltiples
lóbulos que irradian desde un conducto basal muscularizado paa la
pared actinal de la cavidad celómica.

138 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

De cada gónada en su parte basal se origina un solo gonoducto,
que junto al de la gónada vecina va a desembocar abactinalmerte en la
región media de la pared interradial. Guando maduras éstas presentan
una coloración característica para cada sexo: el ovario muestra tonalidades
desde un amarillo pálido a un café anaranjado, mientras que el testículo
es blanco.

Histológicamente la gónada está formada por una superposición
de tres capas de tejidos que se disponen circularmente rodeando una ca-
vidad central o lúmen y constituyen la pared de los lóbulos.

Mesotelio

La capa más externa de la gónada corresponde a un mesotelio o
epitelio uniestratificado, de células y núcleos muy planos que lo tapizan
totalmente (Lám. 1). En forma posterior a la liberación de los gametos,
tanto en machos como en hembras, se produce, en la superficie lobular, una
acumulación de cuerpos basófilos de forma circular a ovalada, con diámetro
promedio de 2,37u, aparentemente muy semejantes a los núcleos del
mesotelio, pero que se hacen menos evidentes en la medida que trans-
curre un nuevo ciclo. También asociado al desove e igualmente en ambos
sexos se observa la formación de una cavidad en la pared lobular (Seno
genital) que contiene en su interior una matriz líquida (Lám. 1 a y b); esta
cavidad se hace menos notoria durante el resto del año, persistiendo muy
disminuida.

Conectivo-muscular

Inmediatamente debajo del mesotelio se encuentra la capa de
tejido conectivo-muscular formada por fibras musculares lisas muy finas
envueltas en una capa de tejido conectivo. En ambos sexos esta capa pre-
senta un comportamiento similar, en los meses previos al desove se observa
como una delgada corrida de células con escasos núcleos muy planos y
altamente basófilicos que colinda, hacia el exterior del lóbulo, con un
pequeño espacio (Seno genital), y hacia hacia el interior con el epitelio
germinal y sus productos (Lám. la). La musculatura sólo se hace evidente
en momentos posteriores al desove ya que, por efecto de la contracción,
los haces musculares se presentan, al microscopio, como manojos de fibras
que se distribuyen por todo el contorno del lóbulo, ocupando una super-
ficie considerablemente mayor que la que ocupan cuando se encuentran
relajados (Lám. 1b).

Fpitelio germinal
Hembras (9)

El epitelio germinal en las hembras se presenta como una capa
discontinua de células ubicadas inmediatamente sobre el tejido conectivo
muscular. Aparentemente no presenta una distribución ordenada y es
posible encontrar, como resultado de su actividad germinal, oogonias soli-
tarias o nidos de ellas distribuidas irregularmente a lo largo de los lóbulos.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 159

Lám. I.- Secciones transversales de gónadas de Patiria chilensis. Fig. A.- Sección de un
ovario después del desove mostrando la estructura general de la pared lobular. Fig. B.-
Sección de un ovario después del desove mostrando el seno genital y fibras musculares
de la capa conectivo muscular. Fig. C.- Sección de un ovario mostrando grupos de
oogonias constituyendo un nido. Fig. D.- Sección de un lóbulo testicular mostrando
espermios y las digitaciones germinales. La escala indicada en las figuras equivale a
100u. cm= conectivo-muscular, eg= epitelio germinal, espm= espermátidas, m=
musculatura, me= mesotelio, no= nido de oogonias, s= espermios, sg= seno genital.

140 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Eám. I.- Cortes histológicos de ovarios de Patiria chilensis en ejemplares recolectados
en Julio de 1976 (Fig. A), Septiembre de 1976 (Fig. B), Octubre de 1976 (Fig. C) y
Diciembre de 1976 (Fig. D). La escala indicada en la figura A equivale a 50u, en las
figuras. restantes equivale-a 100u. od= oocitos en desintegración. EH

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. : 141

Eám. II[.- Cortes histológicos de testículos de Patiria chilensis en ejemplares recolec-
tados en Enero de 1977 (Fig. A), Abril de 1976 (Fig. B), Septiembre de 1976 (Fig. C)
y Octubre de 1976 (Fig. D). La escala indicada en las figuras A y D equivalen a 50u,
la indicada en las figuras B y C equivalen a 100u.

149 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

La primera evidencia de su actividad la constituye la presencia
de oogonias solitarias que no exceden en tamaño los 4u, o nidos de gonias
que presentan un núcleo grande, redondo y central, con un citoplasma
generalmente homogéneo y claro. Cuando las oogonias aparecen en nidos,
su número es muy variable. En estas agrupaciones celulares también se
observa la presencia de oocitos jóvenes que han iniciado o están por iniciar
el crecimiento para convertirse en gametos susceptibles de ser fecundados
((Cevino, Je).

La cavidad lobular, por su parte, se encuentra ocupada durante
casi la totalidad del ciclo por oocitos en diferentes estados de maduración.

Machos (9)

En los machos el epitelio germinal se presenta como una capa
de células planas más o menos constante, rodeando la pared interior de
los lóbulos gonádicos. En un testículo activo pueden distinguirse grupos
de células formando prolongaciones digitiformes por toda la superficie
interior del lóbulo, en las que pueden encontrarse todos los estados de
la espermatogénesis. La sustentación de estos grupos de células se debe
a la presencia de estructuras fibrilares que irradian desde el epitelio ger-
minal y sobre las cuales se disponen formando verdaderos racimos celulares.

Las espermatogonias tienen generalmente un núcleo de forma
redonda y posición central pudiendo llegar a ocupar la mitad de la super-
ficie celular, se tiñe muy poco con los colorantes básicos y es posible ob-
servar en ellos diversos estados de la división celular. La forma de estas
células varía de rectangular a oval con un diámetro promedio de 5,7u.
Sobre éstas se disponen otras de aspecto circular y menor tamaño promedio,
2,7u, cuyo núcleo ocupa casi la totalidad del volumen celular y se tiñe
fuertemente con los colorantes nucleares. En los siguientes estratos celu-
lares deben encontrarse espermatocitos 11 y espermátidas, aunque el paso
de un estado al siguiente parece no involucrar grandes variaciones en el
volumen celular. En el extremo de estas proyecciones y hacia el lúmen
lobular se observan espermios, que en esta especie son esféricos, altamente
basófilos y con un tamaño promedio de 1,2u.

La cavidad lobular se presenta ocupada, durante casi la totalidad
del transcurso del ciclo, por una masa homogénea de espermios claramente
delimitada de las células en gametogénesis y de la pared lobular (Lám. 1d).

CICLO REPRODUCTIVO

Fl ciclo que experimentan las gónadas con una etapa de proli-
feración de gametos y luego liberación de los mismos, se manifiesta en
el caso de las hembras en las fluctuaciones mensuales de los porcentajes
de frecuencia de los grupos de tamaño de los oocitos y en los machos
mediante las variaciones del coeficiente gamético (Figs. 1 y 2). Se puede
añadir, además, que existe un marcado sincronismo entre plena madurez
y aumento del coeficiente gamético en los machos, respecto de la madurez
y aumento de los porcentajes de frecuencia de los grupos de mayor talla
en los oocitos, alcanzando, en ambos casos, los valores máximos en los
comienzos de la primavera.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 143

144 A Lirquen

| | Ola > 0h
0 50
3 96 ( Tumbes
S 48 ¡ | N B |
AA J a A ñ s o) N D E F | M | ):
1976 1971

Fig. 1.- Polígonos de frecuencia, en porcentaje, del tamaño de los oocitos en cortes de
ovarios de P. chilensis.

Hembras

En las hembras coexisten durante parte del año dos poblaciones
de oocitos diferenciables por el rango de tamaño que comprende cada una.
En un ovario próximo a desovar (Septiembre) estas dos poblaciones son
claramente discernibles; pero en Octubre, una vez iniciado el desove, se
observa, principalmente, la presencia de los oocitos de menor tamaño
que por reducción del grupo de talla mayor incrementa, notablemente,
su valor porcentual (Fig. 3). En los meses siguientes los porcentajes ma-
yores corresponden a grupos de oocitos de tamaño menor, pero hay ten-
dencia a un incremento de los valores hacia los grupos de oocitos inme-
diatamente superiores; en los meses de Marzo y Abril esto es evidente y,
ya hacia fines de Julio se cbserva un mayor porcentaje en las tallas media-
nas, las cuales hacia fines de Agosto alcanzan valores sobre el 50%. Luego
en Septiembre los grupos mayores presentan las más altas frecuencias
para desaparecer casi totalmente al mes siguiente. La aparición de la
segunda población se verifica hacia fines de Junio en las cercanías. del
epitelio germinal, mientras que los oocitos de tallas mayores .-ocupan,
generalmente, el área central del lóbulo (Lám. 2a); este fenómeno, que
se hace más evidente en Julio, es observable en un gran porcentaje de la
población (Fig. 3a). El mes de Octubre marca el comienzo del período
de postura, que se efectúa de manera más sincronizada que en la pobla-
ción de machos (Fig. 3c) y sólo algunos ejemplares realizan el desove
en los meses posteriores completándose éste a más tardar en el mes de
Diciembre. :

Los lóbulos ováricos de estrellas capturadas en Enero presentan
solamente oocitos de la misma generación, correspondiendo a aquellos
producidos a comienzos de la estación imvernal próxima pasada y que en
forma posterior al desove han reiniciado el crecimiento comenzando a
ocupar el área medular de los lóbulos. (Fig. 3d).

144 Bol. Soc. Biol: Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

100 ñ Lirquen
80

60

Gametico (9%)

40

20

Coeficiente

1976 1971

Fig. 2.- Variación del promedio muestreal, desviación estándar (línea vertical continua)
y valores extremos del coeficiente gamético (línea vertical discontinua).

La génesis de los gametos femeninos es un proceso que se realiza
en forma continua durante el año, presentando sí un incremento gradual
desde fines de Otoño para llegar a un máximo a fines de Invierno y alcanzar,
en forma previa al desove, un ritmo de actividad menor y más o menos
constante. Finalizada la primera etapa de la división meiótica el oocito
es cubierto por una capa de células (células foliculares), osteriormente,
los oocitos entran en una etapa de crecimiento por incremento del vo-
lumen del ooplasma alcanzando al final de esta un tamaño promedio de
160u. Durante este período los oocitos se empujan entre sí llegando a
ocupar totalmente el espacio disponible en el interior del lóbulo (Lám. 2b).
Coincidiendo aproximadamente con el comienzo de la Primavera, se pro-
duce la contracción de los lóbulos que provoca la expulsión de los gametos,
el desove; simultáneamente ha ocurrido la eliminación de la vesícula ger-
minal lo que permite a los oocitos, en el caso de ser fecundados, finalizar
la meiosis e iniciar la segmentación. Como consecuencia del desove son
expulsados la mayoría de los oocitos maduros, permaneciendo en el inte-
rior del lóbulo, muy próximos a la pared, aquellos de un tamaño inferior
a los 50u y que corresponden a los recientemente generados (Lám. 2c).
Los de una talla mayor que no han sido expulsados sufrirán procesos
de desintegración y desaparecerán de la cavidad lobular (Lám. 2d). Con
posterioridad a esta limpieza del lúmen, los oocitos de reciente producción
irán creciendo y ocupando, progresivamente, toda la cavidad lobular hasta
su expulsión al exterior en el siguiente desove.

“Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo: 54, 1983.

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146 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.
Machos

A partir de Enero la cantidad de gametos aumenta para llegar
a su máximo en Septiembre, en Octubre se observa la presencia de algunos
individuos con coeficientes gámeticos notablemente inferiores a los del
mes precedente, aun cuando existen otros con índices muy altos. En los
meses siguientes la tendencia decreciente del coeficiente gamético es muy
leve, encontrándose un amplio rango de valores en la población. Ya en los

primeros días de Enero esta tendencia se generaliza detectándose, en esa
época, los valores mínimos.

El análisis de los coeficientes gámeticos por individuo, presentado
en la figura 4, muestra la presencia de espermios durante casi todo el
año. Desde Enero a Marzo los gametos tienen una escasa a moderada
representatividad, encontrándose en Enero un número importante de
individuos en los cuales hay actividad generadora de células y ausencia
total de espermios (Fig. 4d). La regeneración de la capa gametogénica,
producto de la actividad del epitelio germinal, conlleva una disminución
paulatina del área libre en el centro del lóbulo. Posteriormente, en los
meses de Febrero y Marzo, ya pueden evidenciarse espermios ocupando
el área central del lóbulo, lo que es evidente en el valor del coeficiente
gamético aunque no alcanzan una representatividad importante (Fig. 4e).
En Abril se observa una expansión de la masa de espermios llegando a
cubrir un 40% del área disponible, esta continúa progresivamente en
toda la población hasta mediados de Septiembre (Fig. 4b). En Octubre
aparecen individuos con coeficientes gaméticos significativamente infe-
riores a los del mes precedente —este fenómeno no es sincrónico en toda
la población ya que el 88% aun mantiene valores similares a los del mes
anterior (Fig. 4c)-. En el mes de Diciembre la condición de individuos
en desove o desovados involucra al 60% de los ejemplares y la brusca
caida del coeficiente gamético, entre mediados de Diciembre y principios
de Enero, marca la expulsión total de los gametos por parte de los indivi-
duos no desovados (Fig. 4d). Una vez concluida la postura el remanente
de espermios en el lúmen testicular es mínimo, tal como puede observarse
en el área testicular ocupada por los gametos en los animales capturados
en Enero (Fig. 4d). La capa espermatogénica, que en Marzo alcanza su
máxima expresión, comienza progresivamente a fines de Abril a disminuir
para hacerse muy delgada e inactivarse durante un corto período de la
estación primaveral. Los fagocitos están escasamente representados en
P. chilensis, limitándose a los machos y, solamente, al período de post-
desove, su presencia parece ser efímera encontrándose únicamente en
algunos ejemplares recolectados durante el mes de Octubre.

El proceso espermatogénico en la población, presenta a través
del año una estructuración bien definida, iniciándose el ciclo en forma
posterior al desove. La gónada en ese momento se presenta retraida, la
totalidad de los gametos han sido eliminados y el epitelio germinal, que
por un corto período ha permanecido inactivo, reinicia su actividad gene-
rando por mitosis espermatogenias. A medida que avanza el proceso, las
células en espermatogénesis se proyectan hacia el interior del lóbulo.

147

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1988.

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148 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo: 54, 1983..

El epitelio germinal se vuelve digitado e igualmente se proyecta hacia el
lúmen con sus espermatogenias y sus digitaciones (Lám. 3a). Los espermios
comienzan a producirse entre principios y mediados de Verano, esta acti-
vidad continúa durante todo el Otoño, aumentando el tamaño lobular
por el continuo incremento de esermios (Lám. 3b). A principios de Invierno
la concentración de gametos es bastante alta pero aun no alcanza su má-
ximo, durante este período comienza a declinar la actividad germinal lo
que se evidencia por una disminución del área ocupada por las células
en espermatogénesis, aun cuando continúa la producción de gametos. A
fines de la estación invernal la cantidad de gametos contenidos en los
lóbulos está llegando a sus más altos niveles y las gónadas se preparan
«para el desove. Se produce, entonces, la detención de la actividad germinal
conllevando una notable reducción y desorganización del área que ocupa-
ban las células en diferenciación (Lám. 3c). Coincidiendo, aproximadamente
con el inicio de la Primavera se realiza la expulsión de los gametos —este.
fenómeno es producido por la contracción de la musculatura que rodea
internamente a cada uno de los lóbulos—-. Como consecuencia del desove
-la gran mayoría de los espermios son eliminados, pero en algunos lóbulos
un pequeño porcentaje de ellos es retenido siendo, posteriormente, elimi-
“nados por procesos autolíticos y presumiblemente, además, por acción de
fagocitos. Durante este período el estrato germinal no es evidente y la
cavidad lobular queda totalmente desocupada para reiniciar un nuevo
ciclo que culminará en el siguiente desove (Lám. 3d).

DISCUSION Y CONCLUSIONES

La presencia de dos muestras tomadas en áreas diferentes a las
del lugar originalmente elegido introduce una dificultad para la interpre-
tación de los resultados; pero, en este caso, los valores obtenidos para ambas
muestras pueden ser considerados como representativos del momento
dentro del proceso general. Tal afirmación puede hacerse sobre la base
de lo siguiente: al observar los gráficos y las tendencias del proceso repro-
RN incluyendo o eliminando aquellos datos obtenidos en las áreas
de alternativa y tanto en los machos como en las hembras, la desviación en
«la tendencia es notoriamente pequeña de modo que las variaciones entre
ellas pueden considerarse como productos del azar. Esta aseveración está
debidamente comprobada mediante los análisis estadísticos pertinentes
(Werlinger, 1981).

: Es notable, tanto en machos como en hembras, la presencia de
una cavidad que se dispone en el interior de la pared lobular, la que es
apenas observable antes del desove pero notoriamente visible uma vez que
éste se imicia; fenómeno ya evidenciado en otros asteroideos (Chia, 1968;
Patent, 1976; Walker, 1974; 1976). También, en relación con la postura,
es evidente la acumulación de estructuras granulares altamente basofílicas,
que se adosan a la pared de los lóbulos testiculares (Lám. la). La presencia
más evidente de estas estructuras en relación con el desove, parece deberse
al efecto combinado de la contracción de los lóbulos y su posterior vaciado,
la contracción es producida solamente por las capas musculares de la región
conectivo-muscular, de este modo las diferencias en la capacidad elástica,

Bol. Soé. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 149

como consecuencia de la constitución de los tejidos, provocaría la separa-
ción entre las capas y la posterior formación de una cavidad notablemente
mayor. Además, y como consecuencia de esta contracción, se efectúa el
vaciado de los lóbulos, lo que provoca la pérdida de turgencia y causa el
plegamiento del mesotelio, observándose al microscopio un epitelio con
una inusitada cantidad de cuerpos nucleares.

La producción de oogonias por parte del epitelio germinal es
constante, aunque más evidente durante el inicio de la estación invernal,
período en el cual pueden observarse abundantes nidos de oogonias. Al
efectuar la medición y recuento para obtener los porcentajes de frecuencia
de cada grupo de tamaño, se puede observar la presencia reiterativa a
través del año de grupos de oocitos de menor tamaño (Fig. 3); siendo evi-
dente -si los oocitos están creciendo- que la presencia de este grupo sólo
se justifica por la incorporación de células provenientes del epitelio ger-
minal.

Chia, en 1968, estudiando un población de Leptasterias hexactis
visualizó la presencia de dos grupos de oocitos de tamaño evidentemente
diferentes y, persistentes a través del año. Pearse, por su parte (in Crump,
1971), ha observado, en ejemplares de Odontaster validus, la presencia de
más de un grupo modal anual en los porcentajes de frecuencia de los dis-
tintos grupos de oocitos. En Patiria chilensis se observa durante cierto
período del año una notable discontinuidad de los porcentajes de fre-
cuencia de los grupos de tamaño de los oocitos, presentándose dos agru-
paciones que se mantienen por un tiempo y que varían en relación a su
representatividad, independientemente en las diferentes etapas. La coe-
xistencia de estos dos grupos modales se verifica solamente hasta iniciada
la postura ya que una vez que esta finaliza permanecen sólo los oocitos de
menor tamaño en el interior de los ovarios (Lám. 2c). Gráficamente el
proceso puede ser dividido en dos períodos, uno, en el cual ambos grupos
son claramente diferenciables y otro en el cual sólo es posible apreciar
una distribución continua de los porcentajes de frecuencia de los diferentes
grupos de tamaño. La disposición de los oocitos de menor tamaño en el
interior de la gónada, aun después del desove, nos indica la presencia de
dos grupos de células de generaciones y estados de desarrollo diferente,
la existencia de un período de maduración de los oocitos mayor que el
comprendido entre dos desoves consecutivos y la presencia de estados de
crecimiento diferentes en cada generación.

El crecimiento de un oocito desde oogonia a oocito fecundable
requiere de un período de aproximadamente 15 meses. Cuando estos han
sido recientemente generados experimentan, en relación con las primeras
etapas de desarrollo, un crecimiento muy rápido, el que posteriormente
se retarda o detiene hasta que los oocitos de la generación anterior son
evacuados. Así, el crecimiento sólo se reinicia una vez comenzada la pos-
tura y se continúa ininterrumpidamente hasta el siguiente desoye, com-
pletándose en aproximadamente un año. Por lo tanto es posible encontrar,
en cualquier momento del ciclo, oocitos en crecimiento, los que corres-
ponden en el caso de estar presente dos grupos modales, a los relacionados
con la moda de mayor tamaño o en su defecto, a los del único: grupo
cuando sólo existe una.moda (Fig. 5). :

150 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

PS 90 po

= E Pan
10 Tumbes
50 Lirquén

Diimetro

1976 1977

Fig. 5.- Valores promedio y desviación estandar (línea vertical continua) del tamaño de
los oocitos por muestra, agrupados en uno o dos conglomerados de acuerdo a la ausencia
o presencia de dos generaciones de células en los ovarios de P. chilensis.

P. chilensis tiene un solo ciclo de reproducción en el año. El
período de postura se inicia con los comienzos de la Primavera y se pro-
longa por 2 3 meses, lapso durante el cual el grueso de la población de
machos y hembras lanzan sus gametos al mar.

AGRADECIMIENTOS

Deseo expresar mis agradecimientos al Sr. Hugo 1. Moyano G.,
Sr, Enrique Bay-Schmith B. y a la Sra. Enriqueta Guzmán, Profesores
de la Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales de la Uni-
versidad de Concepción, por sus valiosas indicaciones y colaboración im-
prescindible en la realización de este trabajo; asimismo, a los laborantes
Srta. Maya Delpín, Sr. Enrique Silva y Srta. Eugenia Spano por la ayuda
prestada en el tratamiento de las muestras.

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-Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo-54, pp. 153-157, 1988. :153

CHARADRIUS COLLARIS,
VIELLOT 1818, INVERNA EN LA
BAHIA DE CONCEPCION (AVES:

CHARADRIIDAE).

Charadrius collaris Vieillot, 1918, winte-
ring in Concepción bay, Chile. (Aves,
Charadriidae)

Héctor Oyarzo Rodríguez*
Víctor Hugo Ruiz Rodríguez*

RESUMEN

Se comunica al área de la Bahía de

Concepción como lugar de invernada
de Charadrius collaris Vieillot, Chorlo
de collar.

ABSTRACT
_ Bahía de Concepción, Chile is re-
cognized as an over-wintering site for
the Collared plover, Charadrius colla-
ris Vieillot.

Keywords: Aves. Charadriidae. Winte-
ring. Neotroical Region.

INTRODUCCION

. Existen antecedentes para suponer,
que por lo menos una fracción de los
individuos que constituyen las pobla-
ciones invernantes de Charadrius co-
llaris en el país, mo abandona éste
como inmigrantes durante la primavera
y verano austral, sino que remontan el
curso de algunos ríos para anidar en
sus riberas (Johnsom, 1965; Philippi,
1962). La presente mota tiene por ob-

jeto comunicar que Charadrius collaris
es visitante común y regular durante
los meses del otoño e invierno austral,
en algunas áreas de la Bahía de Con-
cepción, y aportar nuevos antecedentes,
basados en capturas del chorlo de collar
efectuadas en el curso superior del Río
Diguillín, a una hipotética corriente
migratoria que fluiría verticalmente
durante las distintas épocas del año,
desde la costa marítima hasta las aguas
interiores.

MATERIALES Y METODOS

Durante los años calendario de 1977
a 1979, se realizó un censo de las po-
blaciones de Charadrius collaris, espe-
cialmente invernantes, en los siguien-
tes sectores: a) Isla Rocuant (36944'S;
73004'W: Talcahuano); b) Lenga (360
45'S; 73011'W: San Vicente) y c) Playa
Negra (36044'S; 73000'W: Penco: Con-
cepción). Los censos fueron realizados
una vez al mes, a pie, utilizando pris-
máticos de 7x35 y los datos se agrupa-
ron en una libreta de terreno. Los ejem-
plares recolectados (dos hembras), fue-
ron obtenidos en el curso supenior del
Río Diguillín (36051'S; 72200'W), dis-
tante aproximadamente 120 km. en
línea recta de la costa. Uno de los
ejemplares, el NO 15064, se depositó
en el Museo de Zoología de la Univer-
sidad de Concepción. Los caracteres me-
rísticos de las dos hembras recolectadas
en el curso superior del Río Diguillín
fueron: Largo ala: 105-102 mm. Largo
rectrices: 55-50 mm. Largo Pico: 15-
14.5 mm.

*Depto. Zoología, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Casilla 2407, Universidad de

Concepción, Concepción, Chile,

154 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

RECONOCIMIENTO DE CAMPO DE
CHARADRIUS COLLARIS, CHORLO
DE COLLAR

Debido a la general similitud morfo-
lógica de los chorlos (Charadrius) pue-

den originarse confusiones en la ¡iden-
tificación de aquellas especies que pre-
sentan un sólo collar (completo o in-
completo) por lo que se estima conve-
niente entregar, para las mismas, al-
gunas pautas de reconocimiento:

GC. collaris

(Chorlo de collar)
Collar completo
Región dorsal del cuello
sin collar blanco

Pico negro, algo pro-
longado

Región circun-ocular
emplumada

C. semipalmatus

(Chorlo semipalmado)
Collar completo

Región dorsal del cuello
con collar blanco

Pico corto. Amarillo en
la base

Región circun-ocular con
apterio amarillo naranja

C. alexandrinus

(Chorlo nevado)

Collar incompleto unido
Collar incompleto (no
unido sobre el cuello),

Región superior del

cuerpo con marginacio-
nes rufo acaneladas (va-
riando en intensidad se-
gún la época del año).

Región superior del
cuerpo pardo uniforme,
o al menos sin margina-
ciones acaneladas.

Con el ejemplar capturado, la sepa-
ración entre C. collaris y C. semipalma-
tus se hace inmediatamente evidente,
al constatarse la semipalmadura que
une los tres dedos de éste último.

RESULTADOS Y DISCUSION

De acuerdo a los resultados presen-
tados en Tabla 1, se observa una mayor
concentración de individuos invernantes
durante los meses de Abril a Octubre.
Así mismo, la densidad de Charadrius
collaris fue apreciablemente mayor en
los sectores de Isla Rocuant y Playa Ne-
gra, disminuyendo ostensiblemente en
el sector de Lenga.

Las áreas muestreadas tienen en co-
mún el presentar características de tipo
estuarino, ofreciendo la Isla Rocuant
una costa somera, baja y cortada en
trechos por esteros y canales angostos.
Desde la desembocadura del Río Anda-
lién hacia el sur, se extienden por 8 ó
9 km. una sucesión de lagunillas cena-
gosas, predominando vegetación her-
bácea baja (Salicornia sp. y Spartina sp.),
ubicándose en forma aislada un bosque-
cillo de espinos (Acacia caven) bañado
durante el invierno por amplias lagunas
de aguas transitorias. Charadrius colla-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983. 155

ris presenta en este sector movimientos
condicionados a los ritmos mareales,
encontrándose durante las altas mareas
en la costa marítima, desplazándose
hacia el intenior del estuario del Río
Andalién durante las bajas mareas, esto

TABLA

debido a que amplias zonas del lecho
del río quedan al descubierto, circuns-
tancia que aprovecha, conjuntamente
con la avifauna palúdica del sector, pa-
ra alimentarse de anélidos marinos
(Polychaeta).

N0 1

Censos de Charadrius collaris en Bahía de Concepción durante el período 1977-1979.

AÑOS 1977

MESES R L PN R
Enero — —= 1 —
Febrero — — 1 —
Marzo 5 = = Ze
Abril 10 5 40 8
Mayo 15 25 34 8
Junio 60 2 11 49
Julio 50 40 60 41
Agosto 65 IN 60
Septiembre 15 — 8 18
Octubre 8 — = 16
Noviembre — — = 4
Diciembre — = — —
Totales 228 72nmi197 «217
R = Isla Rocuant

El Chorlo de collar es frecuentemente
acompañado de otros invernantes, como
Zonibyx modestus Lichtenstein (chorlo
chileno, Calidris alba (Pallas) (playero
blanco) y en menor número Rhyncops
nigra cinerascens Spix (rayador), Arena-
ria interpres morinella (Linné) (chorlo
vuelve-piedras) y Limosa haemastica
(Linné) (zarapito de pico recto).

Playa Negra presenta una fuerte in-
tervención antrópica (asiento de una
caleta de pescadores y mariscadores) y
está caracterizada por una playa are-
nosa y angosta desprovista de roqueríos.
La presencia del Chorlo de collar, se
explica dada la corta distancia que la
separa del estuario del Río Andalién,
sin embargo esta especie es la única
representante de la avifauna palúdica
del estuario que alcanza hasta este
sector.

1978 1979
PN R L PN TOTAL,

EE A ES: de pu 2
E a pst a 2 3
a Es 3 = e 10
AT 8 67, 20
a ME
a Due Casta 3 10976
rc dll: Da 61 460
DA a os
Y 17 5 15 97
Pa = 7 56

E ál pa des 6 17
7 = pa As 7

111 219 240 104 253 1641

PN = Playa Negra

El área de Lenga está constituida por
una playa pequeña, de no más de 1 km.
de largo, donde desemboca el río del
mismo nombre, el cual constituye hacia
el interior de su curso, una innumerable
red de canales, con abundante avifauna
acuática, nadadora y vadeadora (Oyarzo
et al, 1978) migratoria o nidificante en
los islotes cubiertos por gramíneas
(Spartina densiflora), observándose los
mismos desplazamientos mareales que
se presentan en Isla Rocuant.

En este sector como en-el de Isla Ro-
cuant, cuando las aves se alimentan en
el lecho del río, es posible observar una
distribución horizontal de la avifauna
vadeadora, condicionada por la mayor
o menor longitud de'sus tarsos meta-
tarsos. Durante estas actividades las
bandadas de Charadrius collaris (10-20

156 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

individuos), no se muestran bien cohe-
sionadas, existiendo entre los integrantes
de las mismas, distancias interespecifi-
cas de unos 9-11 m. lo que se traduce
en una amplia cobertura del espacio
por un número relativamente bajo de
individuos. Por el contrario, Calidris
alba, forma estrechas hileras con distan-
cias interespecíficas mucho menores (10-
13 cm.).

Los ejemplares adultos de chorlo de
collar, fueron recolectados el 14 de Sep-
tiembre de 1979 en el área de la cordi-
llera de Chillán, (curso superior del
Río Diguillín). En este sector, el río
se presenta caudaloso y de corriente rá-
pida, con el fondo y la ribera muy pe-
dregrosa. Es posible encontrar (por lo
menos en esta época del año) a corta
distancia del cauce, lagunas originadas
por las crecidas invernales. En una de
estas, se observaron cuatro ejemplares
del chorlo de collar, capturándose las
dos hembras indicadas, quienes presen-
taban plumaje nupcial “(ampliamente
bordeado y marginado del rufo intenso,
especialmente en la corona) y ovarios
activos. Desafortunadamente, no fue po-
sible analizar histológicamente este úl-
timo material.

Como puede observarse en la Tabla
NO 1, el abandono de la Bahía de Con-
cepción por parte de las poblaciones de

Charadrius collaris, se presenta gradual-
mente, sin la brusca interrupción del

“número de individuos que caracteriza su

llegada. Al efecto, puede tentativamente
formularse el planteamiento, de que
habrían dos grandes grupos en el total
de individuos invernantes: aquellos que
anidan fuera del país, o al menos en
regiones situadas más al norte y rela-
tivamente lejanas al área de invernada,
quienes serían los primeros en hacer
abandono del área (aproximadamente,
entre Agosto y Septiembre), debido a
la mayor distancia a cubrir entre sus
centros de invernada y los de reproduc-
ción, y el otro grupo, constituido por
aquellos individuos que anidan al in-
terior de los ríos o aguas continentales,
quienes por el contrario, serían los úl-
timos en abandonar la Bahía (Septiem-
bre en adelante), debido a que tendrían
que recorrer una menor distancia hasta
sus zonas de anidación. Es evidente, sin
embargo, que este problema sólo podrá
ser dilucidado mediante: a) Un progra-
ma de anillado y marcaje, y b) Cálculos
estimativos del potencial de vuelo ba-
sado en índices lipídicos.

CONCLUSIONES

Se constata la presencia de invernantes
de Charadrius collaris en algunos sec-
tores de la Bahía de Concepción du-
rante los meses del otoño e invierno
austral.

Las áreas de invernada están carac-
terizadas por ambientes de tipo estua-
rino, principalmente la situada en las
márgenes del Río Andalién y su de-
sembocadura, la que por su amplitud y
múltiples posibilidades de alimentación
y refugio presenta comparativamente, el
mayor número de individuos invernan-
tes.

La gran parte de la población de
Charadrius collaris desaparece de estos
sectores en forma gradual, desde co-
mienzos de la primavera austral.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983. 157

Los antecedentes recogidos y la cap-
tura de dos hembras en plumaje nup-
cial y con ovarios activos, sugieren la
presunción de un desplazamiento re-
productivo vertical, mediante el cual
Charadrius collaris anidaría al interior
de aguas continentales, luego de inver-
nar en las áreas costeras de la Bahía
de Concepción.

BIBLIOGRAFIA

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 159 - 162, 1983. 159

NOTA SOBRE CEFALOPODOS DECA-

PODOS COLECTADOS ALREDEDOR

DE LAS ISLAS DE PASCUA Y SALA
Y GOMEZ

Notes on Decapod cephalopods cillected
near Easter and Sala y Gómez islands.

Roberto Prado F.

RESUMEN

Se reporta la presencia de Ommas-
trephes bartrami (Lesueur, 1821) y Sym-
plectoteuthis luminosa Sasaki, 1915 en
las aguas circundantes a Isla de Pascua
e Isla Sala y Gómez (22011'-31034'S;
100018'—109004'W). Este registro amplía
la distribución conocida de Symplecto-
teuthis luminosa al Océano Pacífico
Sudoriental.

ABSTRACT

The presence of Ommastrephes bar-
trami (Lesueur, 1821) and Symplecto-
teuthis luminosa Sasaki, 1915 is reported
in the waters around Easter Island and
Sala y Gomez Island (22011'-31934'S;
100918'-109004"W). This record extends
the known Symplectoteuthis luminosa
distribution to the Eastern South Pa-
cific.

Keywords: Molusca. Cephalopoda. Eas-
ter island. Necton. Tropical Pacific.

INTRODUCCION

Durante el desarrollo de investigacio-
nes de prospección atunera alrededor de
las islas de Pascua y Sala y Gómez en
1979 (Ichikawa y Shirasawa, 1980), se
capturaron ejemplares de dos especies
de calamares identificados como Ommas-
trephes bartrami (Lesueur, 1821) y Sym-
plectoteuthis luminosa Sasaki, 1915.

Esta última especie no ha sido citada
para el Océano Pacífico Sudoriental,
estando hasta ahora registrada en las
aguas del Japón y del Pacífico Sudocci-
dental (Clarke, 1964). Considerando
este hecho y la escasa información que
en general se tiene de los calamares del
Pacífico Suroriental, se ha estimado
oportuno entregar una breve descrip-
ción de ambas especies, además de los
datos biológicos controlados en los ejem-
plares capturados.

Las dos especies se caracterizan por
poseer un manto largo y esbelto, agu-
zado hacia la parte posterior, con aletas
triangulares grandes. La depresión del
sifón (foveola) posee un sistema de plie-
gues O arrugas, que en su parte anterior
son longitudinales, desvaneciéndose hacia
el interior y abajo de la foveola, la que
está delimitada atrás por un pliegue
en forma de media luna, formando un
bolsillo sobre la parte inferior de las
arrugas. El cuello presenta pliegues
conspicuos. Los ojos no sobresalen, y sus
cuencas presentan una incisión anterior
que forma un ángulo o pequeño canal.
La piel bucal posee siete lóbulos co-
nectados a los tentáculos por medio de
conectivos. Estas características concuer-
dan con las entregadas por Steenstrup
(1880; 1887) y Thiele (1935) para la
familia Ommastrephidae.

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162 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

Ommastrephes bartrami posee tentá-
culos más cortos que el cuerpo, cada
uno de los cuales tiene en un margen
de la base de la maza tentacular una
fila de 4-5 ventosas alternadas con 3
tubérculos. La parte distal de los ten-
táculos presenta menos de 100 ventosas.
Los anillos córneos de las mazas ten-
taculares tienen 4 dientes grandes y
agudos separados entre sí, disponiéndose
aproximadamente, a 90 grados uno de
otro, y entre los cuales existen dientes
pequeños. Las ventosas grandes de los
brazos presentan anillos córneos con
varios dientes grandes y cónicos en una
mitad del margen anular y dientes pe-
queños y romos en la otra mitad.

Symplectoteuthis luminosa, por su par-
te, presenta las membranas de protec-
ción ventral del tercer par de brazos
tan anchas como el brazo. Los cartílagos
de cierre del sifón están unidos entre
sí en el límite de los surcos longitudi-
nales y transversales. La característica
más notable de la especie es la pre-
sencia de dos largos fotóforos longitu-
dinales en la parte ventral del manto.
Las ventosas de los tentáculos poseen
anillos córneos con un solo diente cen-
tral grande y los restantes pequeños.
Los machos exhiben hectocotilización
en el brazo ventral izquierdo.

Los ejemplares de ambas especies
fueron obtenidos de noche a un par de
metros de la superficie mediante línea
de mano. La fecha, posición geográfica,
temperatura superficial del mar y datos
biológicos registrados para cada especie
se entregan en las tablas 1 y II. Los
contenidos estomacales se presentaron
bastante digeridos en todos los organis-
mos, pudiendo reconocerse su naturaleza
por la presencia de escamas y, Ocasio-
nalmente, espinas.

Todos los ejemplares de O. bartrami
resultaron ser machos sexualmente ma-
duros, con abundantes espermatóforos
bien desarrollados. Por su parte, todas
las hembras de S. luminosa presentaban
signos de haber copulado recientemente.
Esto lleva, finalmente, a suponer que
el área de Isla de Pascua e Isla Sala y

Gómez corresponde a un área de re-
producción, al menos para una de las
dos especies encontradas,

AGRADECIMIENTOS

Deseo agradecer al Sr. W. Ichikawa
(JAMARC), quien me introdujo al co-
nocimiento teutológico y colaboró en
la obtención de los datos aquí entre-
gados, y al Sr. T. Shirasawa (JAMARC)
por su colaboración en la obtención
del material estudiado.

BIBLIOGRAFIA

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8. In: The Cephalopod papers of Ja-
petus Steenstrup. A translation into
English. Agnete Volspe, Jórgen Knud-
sen and William Rees. Danish Science
Press Ltd., Copenhaguen. Pp. 235-
250. 1962.

Thiele, J., 1935. Handbuch der Syste-
matischen Weichtierkunde. Zweiter
Band. Verlag von Gustav Fischer,
Jena, Pp. 948-995.

Bol. Soc, Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, pp. 163-165, 1983. 163

NUEVO REGISTRO DE HEPATUS
CHILIENSIS H. MILNE EDWARDS
1837 EN CHILE (CRUSTACEA,
DECAPODA)

A new chilean record for Reptus Chi-
liensis H. Milne—-Edwards, 1837.
(Crustacea, Decapoda)

G. Roa y M. A. Retamal

RESUMEN

Se amplía el límite sur de la distribu-
ción de Hepatus chiliensis con el hallaz-
go de un especimen en bahía Coliumo
(36032'S; 72056"W).

El ejemplar recolectado se obtuvo, me-
diante buceo autónomo, en el infrali-
toral arenoso de la bahía.

ABSTRACT

A new southern range for Hepatus
chiliensis H. Milne Edwards, 1837, with
the finding of one specimen in the Bay
of Coliumo is given.

The collected specimen was obtained
by SCUBA diving on the sandy bottom
of the bay (36932'S; 72056'W).

Keywords: Crustacea Decapoda. Geo-
graphical distribution. Chile.

La familia Calappidae se encuentra
representada en Chile por: Mursia gaudi-
chaudii (H. Milne Edwards, 1837) y He-
patus chiliensis H. Milne Edwards, 1837.

Hepatus chiliensis fue descrito sobre
la base de material recolectado en Val-
paraiso. Su distribución geográfica com-
prendía, en la costa sur—oriental del
Pacifico, desde Ecuador hasta Valparaíso,
Chile (Chirichigno, 1970) y el Archipié-
lago de Juan Fernández (Dupré, 1975)
y su distribución batimétrica abarca el
infralitoral y circalitoral blando entre
2.5 a 23 brazas (Rathbun, 1937; Garth,
1957 y Antezana et al, 1966).

En Diciembre de 1981 se recolectó un
macho a 5 m. de profundidad en bahía
Coliumo (36932'S; 72056"W).

El ejemplar examinado presenta las
siguientes medidas: Ancho del cefalotó-
rax: 90.3 mm; Longitud cefalotoráxica:
61.4 mm.

Luego de su identificación queda de-
positado en la colección carcinológica
de la Universidad de Concepción.

Aunque sólo se examinó un ejemplar,
la presencia de esta especie es frecuente
en las pescas artesanales junto a especies
del género Cancer y Taliepus.

El hallazgo permite indicar una nueva
localidad para la especie y al mismo
tiempo ampliar su distribución geográ-
fica hacia la región austral.

Dado que las prospecciones de nues-
tros recursos se encuentran en pleno de-
sarrollo es de esperar que la presencia
de Hepatus chiliensis entre Valparaíso y
bahía Coliumo sea pronto reportada.

*Universidad de Concepción, Departamento de Oceanología.

«164 os 551 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983.

Fig. 1.- Hepatus chiliensis: A: Vista frontal; B: Vista dorsal (izquierda); vista ventral
(derecha). :

Y) . == E E

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 54, 1983. 165

BIBLIOGRAFIA

Antezana, T., E. Fagetti y M. T. López,
1966. Observaciones bioecológicas en
Decápodos comunes de Valparaíso.
Rev. Biol. Mar. 12: 1-60.

Chirichigno, N., 1970. Lista de Crustá-
ceos del Perú (Decapoda y Stomato-
poda) con datos de su distribución
geográfica. Inf. Inst. Mar Perú-Callao
35: 1-95.

Dupre, E., 1975. Lista de Crustáceos De-
cápodos citados para el Archipiélago
de Juan Fernández. CIMAR Doc. Tec.
08/75: 1-45.

Garth, J. S., 1957. Reports of the Lund
University Chile Expedition 1948-49.
29. The Crustacea Decapoda Brach-
yura of Chile. Lund Univ. Arsskr.,
(n. s.) (2) 53(7): 1-130.

Rathbun, M., 1937. The Oxystomatous
and Allied crabs of America. Bull. U.
S. Nat. Mus. 166: vi, 1-278.

A russian abi metd. AOL aqua

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 167-170, 1983. 167

PRESENCIA DE ARACHNITIS UNI-
FLORA PHIL. (CORSIACEAE) EN LA
PENINSULA DE HUALPEN,
CONCEPCION, CHILE

A new record of Arachnitis uniflora
Phil. (Corsiaceae) in Hualpén península,
Concepción Chile.

Eduardo Ugarte* y Jorge Arriagada*

RESUMEN

Se señala la presencia de Arachnitis
uniflora Phil. en la Península de
Hualpén, Concepción (36947'"S; 730
10'W), Chile, y la composición de la
flora acompañante. Se incluye un mapa
con la distribución geográfica de A.
uniflora Phil. y A. quetrihuensis Dimitri.

ABSTRACT

The presence of Arachnitis uniflora
Phil. in Península de Hualpén, Con-
cepción (36047'S; 73010"W). Chile. and
the composition of accompanying flora
are reported. A map showing the known
distribution of A. uniflora and A. que-
trihuensis Dimitri is included.

Keywords: Monocotiledoneae, Corsia-
ceae. Arachnitis. Neotropical Flora.

Arachnitis uniflora Phil. es una inte-
resante planta vascular que habita en
bosques del centro y sur de Chile y sur
de Argentina. Su nutrición, saprofítica,

determina su particular morfología y ha
generado ¡interrogantes acerca de su po-
sición taxonómica.

Philippi (1865a) propuso la creación
de una nueva familia (Arachnitaceae)
para la especie, criterio que ha seguido
Muñoz Pizarro (1971). Engler (1889)
ubicó a Arachnitis junto a Corsia en la
tribu Corsieae de la Burmanniaceae.
Posteriormente, Melchior (1964), si-
guiendo la opinión de varios autores,
incluye a Arachnitis en la familia Cor-
siaceae, creada al cambiar de rango a
la tribu Corsieae.

Dimitri (1972) ha descrito A. quetri-
huensis para el Sur de Argentina, espe-
cie que coexistiría con A. uniflora en
la región de Bariloche.

Se ha encontrado a A. uniflora cre-
ciendo bajo Aristotelia chilensis (Mol.)
Stuntz, Chusqueg spp y en general en
bosques de Nothofagus. En la Región
de Concepción, Chile, no había sido
encontrada después que Neger (1897) la
señalara para un “bosque entre Concep-
ción y La Florida”.

Los objetivos de la presente nota son:
informar sobre el hallazgo de A. un1-
flora en el Santuario de la Naturaleza
Península de Hualpén. Concepción,
Chile; proporcionar una breve descrip-
ción del bosque en que la hemos reco-
lectado y entregar en un mapa de dis-
tribución las localidades en que han
sido encontradas A. uniflora y A. que-
trihuensis según la literatura (Correa,
1969; Dimitri, 1972; Espinosa, 1926;
Fuentes, 1920; Gunckel, 1947; Muñoz,
1971; Neger, 1897; Philippi, 1865a,b;
Rowlee, 1916).

*Departamento de Botánica, Universidad de Concepción. Casilla 2407. Concepción. Chile.

168

'* Bol: Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

o A, uniflora
A A. quetrihuensis

Escala;
0 100 -*200Km,
, NS

qa A e

Fig. 1.- Distribución geográfica de Arachnitis uniflora Phil. y Arachnitis quetrihuensis Ñ
Dimitri. ud Sex. ellos eya sel aero

Bol. Soc, Bicl. Concepción, Chile. Tomo 54, 1983: 169

La población de A. uniflora fue ubi-
cada el 24 de Octubre de 1980 en un
sector boscoso del Parque Botánico
Hualpén (36947'S; 73010"W) que la
Universidad de Concepcióm mantiene
bajo protección desde 1970. Posterior-
mente, ha sido encontrada en otros sec-
tores de la región que se señalan más
adelante (ver material estudiado).

Los numerosos individuos que forman

la población crecen en grupos, de pre-
ferencia cerca de la base de los árboles,
en los sectores menos iluminados y de
mayor humedad.
La composición florística del bosque
de Hualpén en que habita A. uniflora
se indica a continuación, separada por
estratos:

I. Estrato arboreo (7-8 m.): Dominan
renovales de Cryptocarya alba
(Mol.) Looser y en menor pro-
porción de Aextoxicon punctatum
R. et P. y Peumus boldus Mol.

Epífitas: (Con mayor abundancia so-
bre Cryptocarya alba) Sarmienta
repens R. et P., Asplenium tri-
lobum Cav. var. tribolum, Poly-
Podium feuillei Bert. var. feuillei,
Musct spp., Fungi spp.

Lianas, trepadoras: Lardizabala biter-
nata R. et P., Lapageria rosea R.
et P., Proustia Ppyrifolia DC. fma.

Pyrifolia.

11. Estrato arbustivo intermedio (1-
2,5 m.):
Myrceugenia planipes Hook. et
Arn., Chusquea parviflora Phil.

II. Estrato arbustivo bajo (0,3-0,5 m.):
Argythamnia tricuspidata (Lam.)

Muell. —Arg. Cissus striata R. et
Pp.

IV. Estrato herbáceo: Uncinia phleoi-
des (Cav.) Pers. var. Phleoides,
Viola capillaris Pers.

Plántulas: Citronella mucronata R. et
P.) D. Don, Lapageria rosea R.
et P., Cryptocarya alba, Blechnum
hastatum Kaulf,

En sectores vecinos más abiertos se
puede encontrar: Podanthus ovatifolius
Lag., Escallonia Pulverulenta (R. et P.)
Pers. var. glabra Engler, Lithraea caus-
tica (Mol.) Hook. et Arn. Azara integri-
folia R. et P., Gevuina avellana Mol.

En la Fig. 1 se entrega la distribución
geográfica de A. uniflora y A. quetri-
huensis según los registros de que se
dispone. - : tE

MATERIAL ESTUDIADO

— Octava Región. Prov. Ñuble. Cerro

- Cayumanqui, ladera NO. Leg. O.
Mathei, 10-XI-1981. (CONC). Prov.
Concepción, Parque Botánico Hual-
pén. Leg. Arriagada-Ugarte, 20-X-
1980. (CONC).

— Novena Región. Prov. Cautín. Villa-
rrica, Fundo Bellavista. Leg. J.
Theune, XI-1942. (CONC).

— Décima Región. Prov. Osorno, Lago
Rupanco. Leg. W. Meyer, XI-1956.
(CONO).

BIBLIOGRAFIA

Correa, M. N., 1969. Flora Patagónica.
Parte 2. Thyphaceae a Orchidaceae
(excepto Gramineae). Buenos Aires,
219 pp.

Dimitri, J. M., 1972. Una nueva especie
del género Arachnitis Phil. (Corsia-
ceae). Revista Fac. Agron. Univ. Nac.
La Plata. Ser. 2, 48(1): 37-45.

Engler, A., 1889. Burmanniaceae. /n:
Engler, A. y Prantl, K. Die natúrli-
chen Pflanzenfamilien. 2(6): 51. Ver-
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Espinosa, M. R., 1926. Algunas obser-
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Fuentes, F., 1920. Revisiones en la flora
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Gunckel, H., 1947. Breves anotaciones
sobre varias plantas andinas de la
región de la Araucanía. Bol. Soc.
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Muñoz, C., 1971. Chile: plantas en ex-
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Neger, F. W., 1897. Introducción a la
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ción. Anales Univ. Chile 98: 209-251.

Philippi, R. A., 1865a. Descripción de
algunas plantas nuevas chilenas. Ana-
les Univ. Chile 26: 638-650, 1 lám.

Philippi, R. A., 1865b. Uber zwei neue
Pflanzen—-Gattungen. Verh. K. K. Zool.
Bot. Ges. Wien 15: 517-524, 2 lám.

Rowlee, W. W., 1916. Plants from sou-
thern Patagonia collected by Charles
Wellington Furlong. Bull. Torrey Bot.
Club 43: 305-321.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 54, pp. 171-172, 1983.

PYURA CHILENSIS MOLINA, 1782
EN EL NORTE DEL PERU
ASCIDIACEA, PYURIDAE)

Pyura chilensis Molina, 1782 recorded
from northern Perú (Ascidiacea,
Pyuridae)

RS Vásquez*

RESUMEN

Se amplía el área de distribución de
Pyura chilensis Molina, 1782, desde los
179 Lat. Sur (Mollendo, Perú), hasta
los 100 Lat Sur (Huarmey, Perú), lo
que permite determinar que P. chilensis
se distribuye entre los 100 Lat. S. y los
420 Lat. S. (Puerto Montt, Chile).

ABSTRACT

The distribution area of Pyura chi-
lensis Molina 1782, has been widened
from 172 South (Mollendo, Perú) to 109
South (Huarmey, Perú). This fact allows
to establish the limits of the latitudinal
distribution of P. chilensis between 100
S. and 420 S. (Puerto Montt, Chile).

Keywords: Ascidiacea. Pyura. Perú cu-
rrent. Zoogeography.

En Marzo de 1977, el Dr. D. Bonovía
encontró en el yacimiento Los Gavila-
nes cerca de Huarmey en el Norte del
Perú (10902'45”S; 78010'21”"0) grandes

171

cantidades de organismos marinos, entre
estos restos (basurales de poblaciones
nativas que habitaron el lugar en el pa-
sado) había grandes acumulaciones de
túnicas de una ascidia. Muestreando el
litoral de Huarmey encontré en la zona
intermareal rocosa en grietas y paredo-
nes verticales, cantidades apreciables de
Pyura chilensis Molina, 1872. Esta es-
pecie recibe el nombre común de “ci-
ruela de mar” y de “Cochise” en el
norte y sur del Perú, respectivamente.
En Chile se le llama “Piure” o “Pibre”.

Van Name (1949) basado en las mues-
tras recolectadas por la expedición de la
Universidad de Lund, describe a Pyura
chilensis como una especie de transición
de aguas frías de la región Magallánica
en el sur de Chile, determinando el lí-
mite sur de la especie en los 420 de
latitud y Cunningham** (1871) reporta
el límite norte de P. chilensis en los 179
Lat. Sur (Mollendo, Perú).

Se recolectaron ejemplares de Pyura
chilensis en las localidades de Ancón
(11947'S; 779110), Huacho (11908'S;
7793770) y Huarmey (10906'S; 77011'0)
(Fig. 1).

Las características generales de los
ejemplares analizados concuerdan con
la descripción de Pyura chilensis, reali-
zados por Cea (1973). P. chilensis forma
asociaciones epifaunísticas por agregacio-
nes sobre sustratos duros en áreas inter-
mareales en las localidades muestreadas,
existiendo una estrecha relación de con-
tinuidad entre los individuos de una
población, dejando entre ellos intersti-

*Laboratorio de Zoología. Depto. Biología Ambiental y Poblaciones. Facultad de Ciencias Biológicas.
P. Universidad Católica de Chile. Casilla 114 - D, Santiago, Chile.

**Literatura no consultada,

172 ) . ¿=Bol.. Sec. Biol: Concepción, Chile. Tomo 54, 1983.

+ Vásquez ; 1963
o Van Name , 1953

cios que sirven de hábitat a una fauna
abundante de epizoos que forman co-
munidades como las descritas por Gutié-
rrez y Lay (1965) para Antofagasta y por
Zamorano y Moreno (1975) para el lito-
ral de Valdivia.

Los nuevos registros de Pyura chilen-
sis en Ancón, Huacho y Huarmey, per-
miten ampliar la distribución de esta
especie hasta los 109 Sur, indicando que
P. chilensis se encuentra distribuido
entre Huarmey (Perú), 100 Lat. Sur y
Puerto Montt (Chile), 420 Lat. Sur.

El Dr. D. Abbott (com. pers.) iden-
tificó especímenes de P. chilensis de la
localidad de Ancón corroborando la
presencia de esta ascidia en el litoral
nor—peruano.

AGRADECIMIENTOS

Agradezco al Prof. G. Cea, por la
identificación del material biológico, al
Dr. D. Abbott por impulsarme a pu-
blicar estas notas y a la Universidad
Cayetano Heredia (Perú), que dio las
facilidades para la recolección y obser-
vación de los ejemplares capturados.

BIBLIOGRAFIA

Cea, G., 1973. Biología del Piure (Pyura
chilensis Molina, 1782. Chordata Tu-
nicata, Ascidiacea). Gayana Zool., 28:
1-65.

Gutiérrez, J. y Lay, J.. 1965. Observa-
ciones biológicas en la población de
Pyura chilensis, Molina, 1782 en An-
tofagasta (Urochordata, Ascidiacea,
Pyuridae). Est. Oceanol. Chile 7: 1-32.

Van Name, W. G., 1953. Reports of the
Lund Chile Expedition 1948-1949.
Ascidians. Acta Univ. Lund. N. F. Bd.
65(14): 1-20 pp.

Zamorano, J. y Moreno, C., 1975. Comu-
nidades Bentónicas del Sublitoral Ro-
coso de Bahía Corral. I. Area mínima
de muestreo y descripción cuantitativa
de la asociación de Pyura chilensis
Molina, 1782. Medio Ambiente 1: 58—
66.

REGLAMENTO DE PUBLICACION DEL BOLETIN DE LA SOCIEDAD
DE BIOLOGIA DE CONCEPCION

NORMAS GENERALES

El Boletín de la Sociedad de Biología de Concepción publica trabajos cien-
tíficos sobre temas relacionados con biología. Aparece en la forma de uno o más volú-
menes al año, con un número variable de contribuciones. Se podrá publicar trabajos
en español, inglés. y francés, reservándose el comité editor el derecho de autorizar la
publicación de algunos en otras lenguas.

Los trabajos, que deben ser expuestos en sesiones de la Sociedad de Biología
de Concepción, por el interesado o su representante, son de dos categorías: mayores y
notas científicas. Los mayores son aquellos cuya extensión mínima es de seis (6) y
máxima de veinte (20) páginas dactilografiadas a doble espacio tamaño oficio; las notas
científicas son aquellas de menos de seis (6) páginas dactilografiadas; en todo caso el
comité de publicación decidirá su clasificación.

El texto de las notas será continuo, publicado en páginas a dos columnas y
tendrán el siguiente diseño: Título; nombre del autor y lugar de trabajo; Abstract en
inglés; Exposición continua del objeto de la nota; Bibliografía de acuerdo a las reglas
señaladas más adelante. Las motas podrán llevar ilustraciones o gráficos si ellos son
indispensables, mas-en ningún caso mayor de dos, cada uno de un cuarto de página,
los que se ajustarán a las condiciones estipuladas más adelante para los gráficos y foto-
grafías.

Tanto las motas como los trabajos pasarán por el comité editor, quien las
entregará para su revisión a pares. La aceptación para su publicación incumbe exclu-
sivamente a este comité.

Ocasionalmente podrá el comité editor dedicar un volumer completo a un
trabajo de mayor envergadura si la calidad e importancia de éste lo justificaren.

Los trabajos sistemáticos deben ajustarse a las mormas establecidas por los
códigos: “Internacional de Nomenclatura Botánica” e “Internacional de Nomenclatura
Zoológica”, respectivamente.

CARACTERISTICAS QUE DEBEN REUNIR LOS MANUSCRITOS PARA SER
ACEPTADOS POR EL COMITE EDITOR

1.- Ser expuestos previamente en una reunión de la Sociedad de Biología de Con-
cepción.

2.- Entregarse en un original y dos copias, dactilografiadas a doble espacio en papel
oficio, con un margen mínimo de 2,5 cm. en todos los contornos. Las copias deben
. . . . . . >
incluir copias xerox o fotovopias de las ilustraciones.

10.-

11.-

El manuscrito debe seguir el siguiente orden: Título; Nombre de el o los autores;
Dirección de los autores; Título en Inglés; Keywords; Resumen en español; Abs-
tract en inglés (traducción del resumen); Abstract en otro idioma (optativo);
Introducción; Materiales y Métodos; Resultados; Discusión y Conclusiones; Agra-

decimientos; Bibliografía.

Si el trabajo incluye Tablas, éstas deberán ir numeradas correlativamente con
números romanos indicando su lugar en el manuscrito.

Las ilustraciones deben ser confeccionadas en papel diamante o cartulina de
buena calidad con tinta china negra; deben estar numeradas correlativamente
por números arábigos e indicarse su posición dentro del manuscrito; las explica-
ciones de las figuras deben dactilografiarse en conjunto en hoja aparte del manus-
crito o de las láminas. Para los efectos de reducción debe tenerse en cuenta que
el tamaño máximo de las figuras o láminas impresas es de 18,5 cm. de alto por
11,5 cm. de ancho; se recomienda que el tamaño (diagonal = 22 cm.) de las
láminas entregadas con el trabajo original, no exceda al triple de la diagonal
del espacio antes señalado (66 cm.); si la explicación de las figuras de la lámina
va al pie de la misma, el espacio necesario para ello debe considerarse dentro de
las medidas indicadas. Al reverso de cada lámina debe indicarse el nombre del

autor, título del trabajo, y total de láminas que éste incluye.

Sólo se aceptarán fotografías en blanco y negro de calidad óptima, en papel bri-
llante de grano fino.

En el manuscrito deben subrayarse con línea continua sólo los mombres científicos
genéricos e infragenéricos y las locuciones y las diagnosis latinas, para que poste-
riormente aparezcan en letra cursiva.

No se publicarán palabras con todas las letras mayúsculas en el texto, esta forma
se reservará para títulos, subtítulos, avreviaturas de instituciones, v otros espe-
cialmente autorizados por el editor. Los apellidos en el texto irán en minúscula,
con la inicial en mayúscula, sin subrayar.

En el manuscrito se debe indicar con absoluta claridad los títulos (dactilogra-
fiados todos en mayúsculas), cabezas de párrafos, ej.: “Descripción del macho”
(que debe ir en: primera letra mayúscula, siguientes minúsculas y todo subrayado
con línea cortada). La disposición de estos elementos los decidirá finalmente el
editor.

Las citas en el texto deberán corresponder a las aparecidas en la lista de “Biblio-
grafía” y se deberán hacer en la forma más abreviada posible, ej.: Gómez (1891:
46); si son varios los autores: Gómez et al. (1902: 107). No deben indicarse en el
texto las referencias bibliogáficas, salvo que esto se haga en el estudio sinonímico
de géneros y especies (Botánica). No debe usarse número guía por autor, ej.:
Smith (7). Si un autor tiene más de un trabajo en un año y la cita en el texto
puede llevar a confusión al ubicarlo en la lista de “Bibliografía”, se agregará
una letra luego del año, ej.: Pérez (1946a: 49).

La lista de autores y referencias se denominará “Bibliografía”, y comprenderá
solamente las referencias citadas en el texto. La forma de hacerlo se ajustará a
las pautas de los siguientes ejemplos:

a.- Libros

Borror, J. D. y D. M. DeLong. 1966. An introduction to the study of Insects. Holt,
Rinehart and Winston. USA: i-xi, 1-819.

Grassé. P. P. y A. Tétry (Eds). 1963. Zoologie 1. Encyclopédie de la Pléiade 14. Librainie
Gallimard. París: i-xvi, 1-1242.

Ross, H. H. 1964. Introducción a la Entomología general y aplicada. Trad. de la se-
gunda edición norteamericana. Edic. Omega, España. 536 págs.

b.- Artículos en Revistas

Androsova, E. I. 1972. Marine Invertebrates from Adelie Land, Collected by the XII**
and XVih Antarctic Expeditions. 6. Bryozoa. Téthys suppl. 4: 87-102.

Banta, W. C. 1969. The Body wall of the Cheilostomata Bryozoa II. Interzooidal Com-
munication Organs. J. Morph. 129(2): 149-170.

Donoso-Barros, R. 1972. Datos adicionales y comportamiento agresivo de Calyptoce-
phalella caudiverbera (L.). Bol Soc. Biol. Concepción. 40: 95-103.

c.- Artículos de un autor en un libro editado por otro autor

Theoroides, J. 1963. Némathodes, In Grassé, P. P. y A. Tétry (Eds.). Zoologie 1. En-
cpclopédie de la Pléiade 14. Librairie Gallimard, París: 693-722.

12.- Los nombres de las revistas botánicas deben abreviarse de acuerdo al B-P-H
Botanico—Periodicum—Huntianum).

13.- Si un trabajo, por alguna especial circunstancia, deba ser publicado en forma
diferente a las disposiciones anteriores, el autor debe exponer su petición al editor
antes de enviarlo.

APARTADOS

De cada uno de los artículos publicados se entregarán gratuitamente cincuenta
(50) apartados al o los autores.

Cuando se requiriere un número mayor de apartados esto deberá ser comu-
nicado oportunamente al editor, quien indicará el valor por cancelar, sobre los cin-
cuenta gratis, al o los interesados.

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EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE LA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, MAIPU No
769, EL DIA 14 DE OCTUBRE DE 1983.-

SOCIEDAD DE BIOLOGIA DE CONCEPCION — CHILE

Fundada el 30 de Abril de 1927, destinada a “fomentar la investigación en las diferentes
ramas de las ciencias biológicas y la difusión de los conocimientos de esa ciencia”.
Sociedad afiliada a Societé de Biologie de Paris desde 1928.

DIRECTORIO FUNDADOR

Presidente: DR. ALEJANDRO LIPSCHUTZ
Secretario: DR. OrTMAR WILHELM G.
Tesorero: DR. ERNESTO MAHUZIER
Director: DR. ALCIBIADES SANTA CRUZ
Director: DR. GUILLERMO GRANT
Socios: DR. SALVADOR GALVEZ

DR. CARLOS OLIVER SCH.

DIRECTORIO ACTUAL

Presidente: DR. JORGE ARTIGAS C.
Vicepresidente: DR. JUAN CONCHA B.
Secretario: LIC. MARIA E. CASANUEVA C.
Tesorero: LIC. GISELIND WEIGERT T.
Bibliotecario: DR. CARLOS HENCKEL C.
Probibliotecario: LIC. OLGA ARACENA P.
Director del Boletín: PROF. HUGO I. MOYANO G.
Subdirector del Boletín: SR. TOMAS CEKALOVIC K.
Director: LIC. ANDRES ANGULO 0.
Director: DR. RAUL ZEMELMAN Z.

PUBLICACIONES DE LA SOCIEDAD

— Boletín de la Sociedad de Biología de Concepción
— Publicaciones Especiales de la Soc. Biol. de Concepción

CANJE

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CORRESPONDENCIA:

Sociedad de Biología de Concepción
Casilla 2407
CONCEPCION — CHILE.

BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA
DE CONCEPCION — CHILE — ISSN 0037 850X

o 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5

VOLUME 54 YEAR

1983

o 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5 5

CONTENTS

ARRIZAGA, M. A. Seasonal food variation in the common sardine Clupea
(Strangomera) bentincki Norman, 1936 (Pisces, Clupeidae) in the Bio - Bio
Region, Chile. ..omcccnonocononoocnrnnncnonononcnnnnrncnnorornnancrnnoronncnannonnacncnnnrnonnn oc anoconasrrasannsonaraceno

ARTIGAS, J. N. 4Apoxyria cymbafer n. sp. new species and first record of the
genus to Chile (Diptera, Asilidae, Laphystiinae). o.cmoomomnonenormeranrnranecnennonoss

CEI, J. M. and J. C. ORTIZ. Description of Liolaemus coeruleus n. sp. a new
lizard to Argentina (Sauria, Iguanida€). cocomocenccnonononccnnannanonanncnranaonnnonoronenonanonos

CEKALOVIC. T. Catalogue of the Chilean Scorpiones (Chelicerata, Scorpiones).

CEKALOVIC, T. and M. CASTRO. Chiasognathus granti Stephens, 1831 (Coleop-
tera. Lucanidae). description of the larva and new localities for the species.

GARRIDO, N. The Boletaceae from Pinus radiata D. Don in plantations in
Chile (Fungi, Basidiomycetes). eoconccococcnoninonconanenncncnnconnnonenacanonrnnnnncononanenanenoncnononononss

GARRIDO, N., MARTICORENA, C. and E. OEHRENS. Ecological aspects and
crop of Suillus luteus in Pinus radiata forests in the region del Bio - Bio,
A A E E O O EE O OS OS Roco Coo ndo eecoo.

HERMOSILLA, I., URBINA, A. and J. C. CABRERA. Spermatogenesis in the
Chilean Frog Caudiverbera caudiverbera (Linné, 1758) (Anura, Leptodac-
O

ITURRIAGA, R., CARDENAS, H. and L. QUEVEDO. Muscular excitability
changes in rats under tourniquet SCHhOCKk. ooocicicnncnononcarnenannecncnranneonaracononennos

RIVERA, P. Research on Chilean marine diatom flora: historical background,
present status and taxonomic problems. eocoocccconcnonnncnronnonenanenncnsnononenenncnnacacnennnnos

WERLINGER, C. Annual reproductive cycle and some observations on the repro-
ductive apparatus histology of Patiria chilensis (Liitken, 1859) (Echino-
dermata, Asteroidea). eooocmconononcnonnnnnnnnanonnnnncoconocnnanannononnnrnonennennononan an acen anasarnansnnnonennes

NOTES

OYARZO, R. H. and V. H. RUIZ. Charadrius collaris Vieillot, 1918, wintening
in Concepcion bay, Chile. (Aves, Charadriidae). cccmonmnarnsnencesrrererneererescananess

PRADO, R. Notes on Decapod cephalopods collected near Easter and Sala y
Gomez islaMds. e..ccococnonnccocnnnnonennnnnnanonnnnenanonacanononnonornonnno ano nonnnn nen enaana cnn onon cnn nonona non nen sonas

ROA, G. and M. A. RETAMAL. A new Chilean record for Hepatus chiliensis
H. Milne-Edwards, 1937. (Crustacea, Decapoda). .ccoococononononcnnioncnonnnonnsononononecenenos

UGARTE, E. and J. ARRIAGADA. A new record of Arachnitis uniflora Phil.
(Corsiaceae) in Hualpén peninsula, Concepción, Chile). c.cummmmnaonosnsorsrnces.

VASQUEZ, J. A. Pyura chilensis Molina, 1782 recorded from northern Perú
(Ascidiacea, Pyuridae). ccomooniononennernenncnoncancncanennancanononnnncnonrano ran onrarcnn nacen ter cerancan enana canos

70

17

89

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ISSN 0037 - 850X

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BOLETIN
de la

SOCIEDAD de BIOLOGIA

de
CONCEPCION

BOL. SOC. BIOL. CONCEPCION, TOMO 55, 1984

BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA DE CONCEPCION
ISSN 0037—850X (Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile)

“Publicación biológica periódica, no interrumpida, más antigua de Chile”.
Auspiciada por la Universidad de Concepción.

Director responsable: PROF. HUGO I. MOYANO G.
Sub Director: DR. JORGE N. ARTIGAS C.
Representante legal: SR. TOMAS CEKALOVIC K.

Propietario del Boletín: Sociedad de Biología de Concepción.
Domicilio legal: Víctor Lamas 1280, Casilla 2407, Concepción - Chile.

COMITE ASESOR TECNICO

Andrés Angulo O. (U. Concepción) Aldo Meza M. (U. Valparaíso)
Jorge N. Artigas C. (U. Concepción) Hugo I. Moyano G. (U. Concepción)
Jorge Belmar C. (U. Católica, Stgo.) Mélica Muñoz S. (Mus. Nac. Hist. Nat.)

Eduardo Bustos O. (U. de Chile, Stgo.) Carlos Muñoz A. (U. Chile, Santiago)
Hugo Campos C. (U. Austral, Valdivia) Edgardo Oehrens B. (U. del Comahue,

Juan C. Castilla R. (U. Católica, Stgo.) Argentina)
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Juan Concha C. (U. Concepción) Punta Arenas)

Luis Corcuera P. (U. de Chile, Stgo., Carlos Ramírez G. (U. Austral, Valdivia)
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Enrique Contreras M. (U. Concepción; Manuel Rodríguez L. (U. Austral, Valdivia)
Héctor Croxatto R. (U. Católica, Stgo.) Mario Rosenmann A. (U. Chile, Stgo.)
Eduardo del Solar O. (U. Austral, Valdivia) Francisco Saiz G. (U. (Valparaiso)

Gabriela Díaz S. (U. de Chile, Stgo.) Bernabé Santelices G. (U. Católica, Stgo.)
Ramón Formas C. (U. Austral, Valdivia) Roberto P. Schlatter (U. Austral, Valdivia)
Víctor Gallardo G. (U. Concepción) Federico Schlegel S. (U. Austral, Valdivia)
Ernst Hajek G. (U. Católica, Stgo.) Mario Silva O. (U. Concepción)

Arturo Jofré M. (U. Concepción) Haroldo Toro G. (U. Católica, Valparaíso)

Boris Jorquera M. (U. Austral, Valdivia) Luis Vargas F. (U. Católica, Stgo.)
Manuel Krauskopf R. (U. Austral, Valdivia) Juan Vial C. (U. Católica, Santiago)
Clodomiro Marticorena P. (U. Concepción) Ennio Vivaldi C. (U. Concepción)
Oscar Matthei J. (U. Concepción) Raúl Zemelman Z. (U. Concepción)

Toda correspondencia y órdenes de suscripciones deben dirigirse a: Sociedad de
Biología de Concepción, Casilla 2407, Concepción.

Correspondence and subscription orders should be addressed to: Sociedad de
Biología de Concepción. Casilla 2407, Concepción.

Price per volume: US$ 15.0. Air Mail delivery included.

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SOCIEDAD DE BIOLOGIA

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BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA
DE CONCEPCION — CHILE

Organo Oficial de las Sociedades de Biología y de
Bioquímica de Concepción

Publicación Auspiciada por la Universidad de Concepción

TOMO 55 AÑO 1984

SUMARIO

Pág.|
CEKALOVIC, T.: Catálogo de los Pseudoscorpiones y Palpigradi de Chile
CA o A A A A A. 7
DURET, J. P.: Adiciones a los géneros Austrosynapha Tonnoir, 1929 y Tetra-
goneura Winnertz, 1846, de Chile (Diptera, Mycetophilidaci nes 37
MOYANO, H. 1: Chilean Cribrimorpha (Bryozoa—Cheilostomata). como emmm. econo. 47
NORRIS, B., S. PALACIOS and H. SUAREZ: Electrodiagnostic evaluation in
Childhood O o 73
OLIVA M., M.: Proctoeces chilensis, mueva especie (Trematoda, Strigeatoidea,
Fellodistomidae), parásito en Sicyases sanguineus Miller d Troschel, 1843
(EEES IESO). oaconapo coesods dhcooaco!ococcuda PROcurOS, cracocon poauoOO IOcopacOs! EraEcodd odEadaDo! EsosacdS 87
TRAUB, C. E.: Anatomía descriptiva de la dentadura de Pudu Pudu Molina
(ArELOdacila LI e oso aso lente fecal cróead ascos 93
MORILLAS, J. y H. VALERIA L.: Microscopía cuantitativa y madurez sexual
de Trucha Arco Iris, Salmo gatrdnerú Richardsom, 1836. ...co... oococnco oomoonos 119
VILLALBA S., C. y J. FERNANDEZ B.: Lernanthropus guacoldae sp. n. (Cope-
poda: Lernanthropidae), parásito de Sciaena deliciosa (Tschudi, 1844)
(Pisces: Sciacnidac ca e noo canti encnoias orisoia Dania acoso 127
AHUMADA, R., R. MORALES, A. RUDOLPH y P. MATRAI: Efectos del
afloramiento costero en la diagénesis temprana de los sedimentos de la
Bañía de Concepción Ci a ES UA EL 135
MONTOYA, R., F. ALAY, E. KESSI, J. VIDAL y J. CABELLO: Comportamiento
de las Isoenzimas de Lactato Deshidrogenasa de Macerados de cerebro de
Akodon olivaceus pencanus Philippi, 1900, almacenados a distintas tempera-
CU O A o 147
GAVILAN, J. F. e Il HERMOSILLA: Técnica experimental para realizar bio-
ensayos MoxicolóS1cos icon anne acu a aii boa oe aa, 155
NOTAS
FERNANDEZ B., J. y €. VILLALBA S.: Helmintos parásitos de Felis guigna
Mons CA E OS 161

RUIZ, V. H. y C. VILLALBA S.: Nuevo registro de Galeichthys peruvianus
Lútken, 1874 (Pisces: Siluriformes: Ariidae) para Chile. ...occo commmooo seosonss sonoonas 165

Pág.
ALVEAL, E. y V. H. RUIZ: Un pez poco conocido en Chile: Emmelichthys

cyanescens (Guichenot, 1848) (Perciformes: Emmelichthyida€). momo. eos». 167

MOYANO, H. I. y C. VALDOVINOS: Sobre Physalia physalis (Linné, 1758) y
Velella spirans Forskal, 1775, ¡provenientes de la X Región de Chile

(RI SS 171

RUIZ, V. H. y J. FERNANDEZ B.: Primer registro de Echinorhinus cooket
Pietschmann, 1928 (Pisces: Squaliformes: Squalidae) para Cinle: on 175

ALARCON, M., G. CEA C. y G. WEIGERT TH.: En torno a la acción clastó-
gena de secrecios naturales de organismos eucariOMtes. moco commons eenmnnoo renos 1

COMUNICACIONES Y MISCELANEA

ARTIGAS, J. N.: Conmemoración del 57 Aniversario de la Fundación de la
Sociedad” de Biología de Concepcion: (1921 MI eE 181

PAZ O., R.: El Profesor Dr. Carlos Henckel Christoph (1899-1984)... om... 185

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 7-35, 1984. 7

CATALOGO DE LOS PSEUDOSCORPIONES Y PALPIGRADI
DE CHILE (CHELICERATA)

Catalogue of the Chilean Pseudoscorpiones and Palpigradi (Chelicerata)

TOMAS CEKALOVIC K*

RESUMEN
El presente catálogo de los Pseudoscorpiones y Palpigradi de Chile comprende
77 especies, incluidas en 33 géneros y 9 familias para el primero y 3 especies, con 2
géneros y 1 familia para el segundo. Para cada especie se entrega la sinonimia, colección
donde se encuentra depositado el tipo (si existe información); todas las localidades
de captura en Chile y la bibliografía correspondiente.

ABSTRACT
This catalogue includes the Chilean Pseudoscorpiones: 77 especies in 33 genera
and 9 families, and Palpigradi: 3 species in 2 genera and 1 family. For each species
the following data are added: synonimy, zoological collection where the type (if extant
is deposited; Chilean localities and bibliography.

Keywords: Chelicerata. Pseudoscorpiones. Palpigradi. Taxonomy. Chile. Neotropical
Región.

INTRODUCCION

Los Pseudoscorpiones chilenos fueron dados a conocer por pri-
mera vez en la obra de Gay, “Historia Física y Política de Chile” (1849),
por Pablo Gervais, quien cita tres especies: Chelifer angustus, Ch. cimex
y Ch. coecus. Con posterioridad Ellingsen entre los años 1904-1910, Cham-
berlin (1923-1929), y otros describen muevas especies que se incorporan
a nuestra fauna. A partir de 1930 el investigador Max Beier, del Museo
de Viena, fue quien dio el más grande impulso al conocimiento de los
pseudoscorpiones, no sólo de Chile, sino a nivel mundial, publicando
alrededor de un centenar de trabajos, 16 de ellos mencionando especies
existentes en Chile. Uno de los más importantes para nuestra fauna, es
la la revisión del grupo (1964), donde describe varios nuevos géneros y

*Conservador de Museo de Zoología. Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales. Casilla 2407.

Universidad de Concepción. Concepción. Chile.

8 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

especies e incluye una clave para el reconocimiento de las especies. En las
últimas dos décadas, desde 1962, Vitali di Cistri revisa algunos géneros y
las familias Cheiridiidae, Gymnobisiidae y Menthidae, aclarando proble-
mas y conceptos sistemáticos y describiendo nuevas especies.

Los Palpigradi son pocos conocidos a nivel mundial y el número
de especialistas que los estudian es reducido. En Chile existe una sola
especie endémica, otra conocida tanto para Paraguay como Chile y la
última cosmopolita, descrita originalmente de las islas del Mediterráneo.
El conocimiento de la fauna chilena se debe principalmente al Dr. B.
Conde, de la Universidad de Nancy, Nancy, Francia.

El presente catálogo es parte del bosquejo planificado por el
autor, para reunir toda la información de la fauna arachnológica de Chile,
ya fueron publicadas las partes correspondientes a Solifugae (Cekaloviéc,
1975 y Scorpiones 1983). La información bibliográfica, sugerencias y
revisión de parte de este catálogo se debe a la valiosa ayuda y colabora-
ción de Vitali di Castri, del Museum National d'Histoire Naturelle de
Paris, a quien se le agradece muy especialmente, igualmente mis agrade-
cimientos al Prof. Hugo 1. Moyano y al Dr. J. Artigas del Depto. de
Zoología, Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad de Concep-
ción, por sus consejos y sugerencias,

CLASE ARACHNIDA Lamarck, 1801

ORDEN PSEUDOSCORPIONES Latreille, 1818
(= “FAUX-SCORPIONS” en Cuvier, 1917)

SUBORDEN HETEROPHYRONIDA Chamberlin, 1929
(= CHTHONIINEA Beier, 1932)

Familia CHTHONIIDAE Hansen, 1844

Género AUSTROCHTHONIUS Chamberlin, 1929
Ann. Nat. Hist., 1929, 10(4): 68.

1.- Austrochthonius chilensis (Chamberlin), 1923

Chthontus chilensis Chamberlin, 1923, 27: 187, fig. 20
Austrachthonius chilensis Chamberlin, 1929, 10(4): 29; Beier, 1932,
57: 38; Beier, 1962, 1: 131; Beier, 1964, 67: 312-313; Di Castri, 1968,
40(1): 145; Di Castri, 1975, 34(89): 125; Harvey, 1981, 5(6): 239.

Localidad típica: CHILE. Chiloé: Butalcura.

Distribución: CHILE. Coquimbo: Fray Jorge; Valparaíso: Algarrobo, Za-
pallar; Santiago: Rinconada, Los Maitenes, Batuco, Farellones; Llanqui-
hue: Frutillar; Chiloé: Butalcura; ARGENTINA. Río Negro: Nahuel
Huapi.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 9

2.- Austrochthonius chilensis magalhanicus Beier, 1964.

Austrochthonius chilensis magalhanicus Beier, 1964, 67: 313; Di Cas-
ii e) sad: Casale 1 Te

Localidad típica: CHILE. Magallanes.

Distribución: CHILE. Magallanes

3.- Austrochthonius persimilis Beier, 1930.
Austrochthonius persimilis Beier, 1930, 23: 205, fig. 10; Beier, 1932,

57: 39, fig. 43; Beier, 1964, 67: 313-314, fig. 1; Di Castri, 1968, 40(1):
145; Di Castri, 1975, 34(89): 125.

Localidad típica: CHILE.

Distribución: CHILE. Coquimbo: Talinay; Valparaíso: Dunas de Alga-
rrobo; Llanquihue: Quilanto.

4.- Austrochthonius semiserratus Beier, 1930.

Austrochthonius semiserratus Beier, 1930, 23: 206, figs. 11-12; Beier,
1932, 57: 39, figs. 44-45; Beier, 1964, 67: 314; Di Castri, 1968, 40(1): 145;
Di Castri, 1975, 34(89): 125-126; Di Castri, 1976, 9: 61, 62.

Localidad típica: CHILE. Cautín: Temuco, Pitrufquén.

Distribución: CHILE. Santiago: Farellones; Cautín: "Temuco, Pitrufquén;
Llanquihue: Frutillar, Parque “Vicente Pérez Rosales”.

Género CHILIOCHTHONIUS Di Castri, 1975.
Bull. Mus. Nac. Hist. Nat. 334(236): 1277-1278.

5.- Chiliochthonius centralis Di Castri, 1975.

Chiliochthonius centralis Di Castri, 1975, 334(236): 1278-1280, 1829,
figs. 1-6,

Localidad típica: CHILE. Santiago: Quebrada La Plata.

Distribución: CHILE. Santiago: Quebrada La Plata.

10 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 55, 1984.
6.- Chiliochthonius montanus Di Castri, 1975.

Chiliochthontus montanus Di Castri, 1975, 334(236): 1280-1282, 1289,
figs. 7-12.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Farellones.

Distribución: CHILE. Santiago: Farellones.

Género DREPANOCHTHONIUS Beier, 1964.
Ann. Nat. Mus. Wien, 67: 314-315.

7.- DrePanochthonius horridus Beier, 1964.

Drepanochthonius horridus Beier, 1964, 67: 315-316, fig. 2.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Zapallar (Quebrada de Aguas Claras).
Distribución: CHILE. Valparaíso: Zapallar (Quebrada de Aguas Claras).

Género FRANCOCHTHONIUS Di Castri, 1975.
Bull. Mus. Nat. Hist. Nat. 334(236): 1283-1285.

8.- Francochthonius hirsutus Di Castri, 1975.

Francochthonius hirsutus Di Castri, 1975, 334(236): 1285-1290, figs.
13-19.

Localidad típica: CHILE. Valparaiso: Cerro El Roble.
Distribución: CHILE. Valparaíso: Cerro El Roble.

Género PSEUDOTYRANNOCHTHONIUS Beier, 1930.
Boll. Lab Portici 23: 207.

9.- Pseudotyrannochthonius octospinosus Beier, 1930.

Pseudotyrannochthonius octospinosus Beier, 1930, 23: 208, fig. 15
Beier, 1932, 57: 71; Beier, 1964, 67: 316-317, fig. 3.

Localidad típica: CHILE. Cautín: “Temuco.

Distribución: CHILE. Talca: Costa (Quebrada de Córdoba); Cautín:
Temuco; Llanquihue: Frutillar.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 11

10. Pseudotyrannochthontus rossi Beier, 1964.
Pseudotyrannochthonius rossi, Beier, 1964, 67: 317-318, fig. 4.

Localidad típica: CHILE. Valdivia: Km. 30 Sur de Valdivia.

Distribución: CHILE. Valdivia: Km. 30 Sur de Valdivia.

11.- Pseudotyrannochthonius silvestriz (Ellingsen), 1905.

Chthontus silvestriz Ellingsen, 1905, 29: 327.

Pseudotyrannochthonius silvestriz Beier, 1930, 23: 208, fig. 14; Beier,
1932, 57: 70, fig. 85; Beier, 1964, 67: 316.

Localidad típica: CHILE. Cautín: Pitrufquén.

Distribución: CHILE. Santiago: Santiago; Talca: Costa (Quebrada de
Córdoba); Cautín: Pitrufquén.

Género LECHYTIA Balzán, 1891.
Ann. Soc. Ent. France 60: 499.
12.- Lechytia chilensis Beier, 1964.
Lechytia chilensis Beier, 1964, 67: 319, fig. 5.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Los Maitenes.
Distribución: CHILE. Santiago: Los Maitenes, 1100-130 m.

13.- Lechytia kuscheli Beier, 1957.
Lechytia kuscheli Beier, 1957, 5: 543-554, fig. 1.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Isla Juan Fernández, Masatierra
(Guindal de la Pólvora).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Isla Juan Fernández, Masatierra (Guin-
dal de la Pólvora, 300 m.).

Género SATHROCHTHONIUS Chamberlin, 1962,
Bull. Amer. Mus. Nat. Hist. 123: 203-204.
14.- Sathrochthontus pefauri Di Castri, 1974.

Sathrochthontus pefauri Di Castri, 1974, 33(87): 194-201, láms. 1-3,
figs. 1-14.

Localidad típica: CHILE. Malleco: Cordillera Nahuelbuta.

Distribución: CHILE. Malleco: Cordillera Nahuelbuta, 1.000 m., ex—
Araucaria sp.

19 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 55, 1984.

SUBORDEN NEOBISIINEA Belier, 1932

(= DIPLOSPHYRONIDA (parte), Chamberlin, 1929)

Familia GYMNOBISIIDAE Beier, 1947

Género MIROBISIUM Beter, 1931
Mitt. Zool. Mus. Berlin 17(2): 304.

15.- Mirobistum chilense Beier, 1964.

Gymnobisium chilense di Castri, 1963, 10: 39-49, figs. 13-36; Beler,
1964, 67: 320-321, fig. 6; di Castri, 1970, 30(80): 7.

Mirobisium chilense Beier, 1964, 67: 323-324, fig. 8; di Castri, 1970,
42(2): 383-384, fig. 2; Cekalovic, 1976, Ud
Localidad típica: CHILE. Magallanes: Río Caleta.

Distribución: CHILE. Talca: Quebrada de Córdoba; Arauco: Isla Mocha;
Malleco: Cordillera Nahuelbuta, ex-Nothofagus oblicua, N. antarctica, N.
dombeyi y Araucaria araucana; Llanquihue: Frutillar, Quilantó, Los
Riscos; Magallanes: Río Caleta, ex-Nothofagus Pumilio, N. betuloides y
Drimys winteri, Río El Ganso, Los Robles.

16.- Mirobistum dimorphicum di Castri, 1970.

Gymnobisium chilense Beier, 1964, 67: 323-328 (parte).
Mirobistum dimorphicus di Castri, 1970, 42: 129.

Localidad típica: CHILE. Llanquihue: Frutillar.
Distribución: CHILE. Llanquihue: Frutillar, Los Riscos, Quilantó.

17.- Mirobissum minore di Castri, 1970.

Gymnobisium chilense di Castri, 1963, 10: 39 (parte).
Mirobistum minore di Castri, 1970, 42, 129-131, figs. 1-2.

Localidad típica: CHILE. Malleco: Parque Nacional Nahuelbuta.

Distribución: CHILE. Malleco: Cordillera Nahuelbuta, Puesto Cabrería.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 13

Género VACHONOBISIUM di Castri, 1963.
Inv. Zool. Chilenas 10: 31.

138.- Vachonobistum heros (Beier), 1964.

Gymnobistum heros Beier, 1964, 67: 322-323, fig. 7.
Vachonobissum heros di Castri, 1970, 42: 133.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Farellones.
Distribución: CHILE. Santiago: Farellones, 2.400 m.

19.- Vachonobistum intermedium (di Castri), 1963.

Gymnobisium intermedium di Castri, 1970, 42: 132-133.
Vachonobistum intermedium di Castri, 1963, 10: 49-58, figs. 37-54.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Polpaico (Cordillera de la Costa).

Distribución: CHILE. Santiago: Polpaico (Cordillera de la Costa), 550
m., ex-Lithraea caustica y bajo “humus” de Colliguaya. odorifera.

20.- Vachonobistum troglophilum di Castri, 1963.

Gymnobistum montanum di Castri, 1963, 10: 58-67, figs. 55-82 (parte).
Vachonobisium trogloPhilum di Castri, 1963, 10: 32-38, figs. 1-12;
di Castri, 1970, 42: 131-132.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Cerro El Roble.

Distribución: CHILE. Valparaíso: Cerro El Roble, ex-StiPa sp. y en hoja-
rasca de Nothofagus oblicua var. macrocarpa.

Familia IDEORONCIDAE Chamberlin, 1930.

Género DINORONCUS Beier, 1931.
Mitt. Zool. Mus. Berlin 17: 305.

21.- Dinoroncus chilensis (Ellingsen), 1905.

Ideobistum (Ideoroncus) chilense Ellingsen, 1905, 29: 326.
Dinoroncus chilensis Beier, 1932, 57: 172, fig. 202; Araujo Feio, 1944,
44: 4; Beier, 1964, 67: 324-325.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Santiago.
Distribución: CHILE. Santiago: Santiago; ARGENTINA. La Rioja.

14 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Género RONCUS Koch, 1873.
Ueber Darst Eur. Chernet, p. 44.

22.- Roncus chthontiformis Balzán, 1891.

Roncus chthoniiformis Balzán, 1891, (2), 9: 445, fig. 24.
Lechytia chthoniiformis Balzán, 1891, 60: 549; Beier, 1932, 57: 74,
fig. 89; Mello-Leitao, 1939, 4(17): 117; Beier, 1959, 1: 186; Beier, 1964,

67: 318.
Localidad típica: No se obtuvo información.

Distribución: CHILE. Aconcagua: Hacienda Illapel; PERU; PARAGUAY;
ARGENTINA. Resistencia, Chaco.

Familia MENTHIDAE Chamberlin, 1930.

Género OLIGOMENTHUS Beier, 1962.
Biol. Amer. Austral VI: 131-157.

23.- Oligomenthus chilensis di Castri, 1969.
Oligomenthus chilensis di Castri, 1969, 41(2): 502-506, figs. 1-10.
Localidad típica: CHILE. Antofagasta: Paposo.

Distribución: CHILE. Antofagasta: Paposo, 650 m.

Familia OLPIIDAE Chamberlin, 1930.

Género STENOLPIUM Beier, 1954.
Sonderabdruck aus Titschack 4: 5.

24.- Stenolpium asperum nitrophilum Beier, 1964.
Stenolpium asperum nitroPhilum Beier, 1964, 67: 325, fig. 9.
Localidad típica: CHILE. Tarapacá: Pampa del "Tamarugal.

Distribución: CHILE. Tarapacá: Pampa del Tamarugal.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 15

Género NEOMINNIZA Beier, 1930.
Boll. Lab. Zool. Portici 23: 202.

25.- Neominniza divisa Beier, 1930.

Neominniza divisa Beier, 1930, 23: 203, figs. 7-8; Beier, 1932, 57:
207, fig. 237; Beier, 1964, 67: 326-327, fig. 10.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Viña del Mar.

Distribución: CHILE. Valparaíso: Viña del Mar; Santiago: Rinconada,
Farellones, 2.000-2.400 m.

26.- Neominniza halophila Beier, 1964.
Neominniza halophila Beier, 1964, 67: 327-329, fig. 11.
Localidad típica: CHILE. Coquimbo: Punta Teatinos.

Distribución: CHILE. Punta Teatinos (Km. 12 Norte de La Serena).

Género THAUMATOLPIUM Beier, 1931.
Mitt. Zool. Mus. Berlin 17: 313.

27.- Thaumatolpium caecum Beier, 1964.

Thaumatolpium caecum Beier, 1964, 67: 335-336, fig. 15.
Localidad típica: CHILE. Coquimbo: 10 Millas Oeste de Vicuña.
Distribución: CHILE. Coquimbo: 10 Millas Oeste de Vicuña.

28.- Thaumatolpium kuscheli Beier, 1964.

Thaumatolpium kuscheli Beier, 1964, 67: 330-331, fig. 12.
Localidad típica: CHILE. Atacama: Carrizal Bajo.
Distribución: CHILE. Atacama: Carrizal Bajo; Coquimbo: Los Choros.

29.- Thaumatolpium longesetosum Beier, 1964.

Thaumatolpium longesetosum Beier, 1964, 67: 333-335, fig. 14.
Localidad típica: CHILE. Coquimbo: Talinay.

Distribución: CHILE: Atacama: El Tofo, 800 m.; Coquimbo: Talinay,
800 m.

16 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.
30.- Thaumatolpium robustus Beier, 1964.

Thaumatolpitum robustus Beier, 1964, 67: 331-333, fig. 13.
Localidad típica: CHILE. Atacama: Huasco.

Distribución: CHILE. Atacama: Huasco.

31.- Thaumatolpium silvestri (Beier), 1930.

Ideoroncus silvestri Beier, 1930, 23: 204, fig. 9.
Thaumatolpium silvestrii Beier, 1932, 57: 199, figs. 229-230, Beler,
1964, 67: 329-330.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Viña del Mar.
Distribución: CHILE. Coquimbo: Punta Teatinos (Km. 12 Norte La

Serena); Valparaíso: Viña del Mar.

Género SERIANUS Chamberlin, 1930.
Ann. Mag. Nat. Hist. (10), 5: 589, 594.

32.- Serianus patagonicus (Ellingsen), 1904.

Garypus patagonicus Ellingsen, 1904, 19(480): 5.

Neominniza patagonica Beier, 1932, 57: 208.

Serianus patagonicus Beier, 1959, 1: 198, fig. 11; Beter, 1962, 1: 133;
Beier, 1964, 67: 336-338, fig. 16; Cekalovic, 1976, 37: 18.

Localidad típica: CHILE. Patagonia (sin indicar localidad precisa).
Distribución: CHILE. Coquimbo: 22 Millas Sur de La Serena; Aysén:
Puerto Cristal, Río Murta (Lago Buenos Aires); Magallanes: La Península

(Lago Toro), Puerto Williams (Isla Navarino), Patagonia; ARGENTINA.
Neuquén: Lago Correntoso; Río Negro: Lago Trebol.

Familia GARYPIDAE Hansen, 1894.

Género GEOGARYPUS Chamberlin, 1930.
Ann. Mag. Nat. Hist. (10), 5: 609.
33.- Geogarypus (Geogarypus) bucculentus Beier, 1955.
Geogarypus (Geogarypus) bucculentus Beier, 1955, 4: 206-207, figs.
1-2

Geogarypus bucculentus Beier, 1957, 5: 454.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 17

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández: Plazoleta
Yunque.

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más a Tierra (Pla-
zoleta Yunque, 200 m., Bahía Cumberland, 100 m,, ex—Dryopteris inae-
qualifolis).

Género PROGARYPUS Belier, 1931.
Mitt. Zool. Mus. Berlin 17: 317.

34.- Progarypus longipes Beier, 1964.
Progarypus longipes Beier, 1964, 67: 340-341, fig. 18.
Localidad típica: CHILE. Atacama: El Portillo.

Distribución: CHILE. Atacama: El Portillo, 1.000-1.500 m.

35.- Progarypus marginatus Beier, 1964.
Progarypus marginatus Beier, 1964, 67: 338-339, fig. 17.
Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Algarrobo.
Distribución: CHILE. Coquimbo: Fray Jorge, 600 m.; Valparaíso: Alga-

rrobo; Santiago: Farellones, 1.000 m.; Linares: Batuco, 550 m., Costa Du-
nas Las Gruces; Arauco: Isla Mocha, 400 m.

Familia CHEIRIDIIDAE Chamberlin, 1931.

Género APOCHEIRIDIUM Chamberlin, 1924.
Pan Pacific Ent. 1: 34.

36.- Apochetridium chilense di Castri, 1962.

Apocheiridium chilense di Castri, 1962, 8: 123-126, fig. 2; Beler,
1964, 67: 341.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Zapallar (Quebrada El Tigre).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Zapallar (Quebrada El Tigre).

18 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

37.- Apocheiridium leopoldi di Castri, 1962.

Apocheiridium leopoldi: di Castri, 1962, 8: 121, fig. 1; Beier, 1964,
67:1341:

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Cerro El Roble.

Distribución: CHILE. Valparaíso: Cerro El Roble.

38.- Apocheiridium (Chiliocheiridium) serenense di Castri, 1969.

APocheiridium (Chiliocheiridium) serenense Di Castri, 1969, 41: 267—
279, figs. 1-25.

Localidad típica: CHILE. Coquimbo: Bahía Guanaqueros.

Distribución: CHILE. Coquimbo: Bahía Guanaqueros, ex-Lithraea caus-
tica.

Género CHEIRIDIUM Menge, 1855.
N. Sch. Gess. Danzing 5(2): 36.

39.- Cheiridium andinum di Castri, 1962.

Cheiridium andinum di Castri, 1962,8: 126-128, figs. 3a—b; di Castri,
1965, 12: 69; Beier, 1964, 67: 341; di Castri, 1969, 41: 266.

Localidad típica: CHILE. Aconcagua: Los Andes (Hacienda San Vicente).

Distribución: CHILE. Aconcagua: Los Andes (Hacienda San Vicente), ex—
ProsoPis chilensis; Santiago: Curacaví (Fundo Chorrillos), ex-Acacia ca-
vens y Lithraea caustica.

40.- Cheiridium dancona: di Castri, 1965.

Cheiridium dancona: di Castri, 1965, 12: 70-82, figs. 1-26; di Castri,
1966, 1: 381, fig. 2; di Castri, 1969, 41: 266.

Localidad típica: CHILE. Atacama: Monte Amargo.

Distribución: CHILE. Antofagasta: Paposo, 600 m., ex-Euphorbia lacti-
flua; Atacama: Monte Amargo, 160 m., ex-Geoffroea decorticans.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 19"

Género NEOCHERIDIUM Beier, 1932.
Das Tierreich 58: 9.
41.- Neocheridium beieri di Castri, 1962.

Neocheridium beieri di Castri, 1962, 8: 131-134, figs. 5a—b; Beier,
1964, 67: 341; di Castri, 1969, 41: 266.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Quebrada La Plata (Hacienda La
Rinconada de Maipú).

Distribución: CHILE. Antofagasta: Paposo, ex—-Euphorbia lactiflua; San-
tiago: Oucbrada La Plata, 700 m., Hacienda Las Palmas, 210 m., Curacaví
(Fundo Chorrillos).

42.- Neocheridium (Austrocheiridium) chilense di Castri, 1962.

Neochdina (Austrocheiridium) chilense di Castri, 1962, 8: 134
137, figs. 6a—b; Beier, 1964, 67: 341; di Castri, 1969, 41: 266-267.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Quebrada de La Plata (Hacienda
La Rinconada de Maipú).

Distribución: CHILE. Antofagasta: Paposo; Santiago: Quebrada La Plata

(Hacienda La Rinconada de Maipú), 550 m.; El Arrayán, 1.000 m., ex-
Lithraea caustica.

SUBORDEN CHELIFERINEA Beier, 1932.

(= MONOSPHYRONIDA (parte) Chamberlin, 1929)
- Familia CHERNETIDAE Menge, 1855.

Género LAMPROCHERNES Tómosvary, 1882.
Math. termes Kózlen 18: 185.
43.- Lamprochernes chilensis Beier, 1964.
Lamprochernes chilensis Beier, 1964, 67: 342-343, fig. 19.
Localidad típica: CHILE. Tarapacá: Cuya (Río Camarones).

Distribución: CHILE. Tarapacá: Arica, Cuya (Río Camarones), bajo
Baccharis petiolata var. rotundifolia y Atriplex sp.

20 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984,

Género CORDYLOCHERNES Beler, 1932.
Zool. Anz. 97: 265.

44.- Cordylochernes scorpioides (Linnaeus), 1758.

Acarus scorpi0ides Linnaeus, 1758, 10, 1: 616 N?2 8.

Phalangium acaroides Linnaeus, El (LA LL NEO
Chelifer americanus DeGeer, 1778, 7: 337, lám. 42, figs. 1-5.

Chelifer nodulimanus “Tómosvary, 1889, lp

Chelifer (Lamprochernes) macrochelatus Chamberlin, 1923, 27: 190,
ze

Cordylochernes peruanus Beier, 1932, 97: 265.

Cordylochernes brasiliensis Beier, 1932, 97: 265.

Cordylochernes scorpioides Beier, 1948, 1: 470; Beier, 1959, 1: 206:
Beier, 1964, 67: 343.

Localidad típica: América.

Distribución: CHILE. Tarapacá: Valle de Azapa; PERU. Tacna: Tingo
María; Yurac; Río Paraná; La Merced; Valle de Chanchamayo; Río Hua-
llaga; Cueva de las Lechuzas; ECUADOR. Puyo; Santo Domingo de los
Colorados Pichinga; Pichilingue; COLOMBIA. Cauca, 1.140 m.; BRASIL.
Manaus; Pará; CENTRO AMERICA.

Género ANASPEROCHERNES Beier, 1964.
Ann. Nat. Mus. Wien. 67: 343-344.
45.- Anasperochernes ambrostanus Beier, 1964.

Anasperochernes ambrosianus Beier, 1964, 67: 303-305, fig. 1 (Tipo
hembra N* 2082, depositado en el Mus. Hist. Nat. Santiago).

Localidad típica: CHILE. Atacama: Isla San Ambrosio, 470 m, ex-T'ham-
noseris lacerata.

Distribución: CHILE. Atacama: Isla San Ambrosio, 470 m., ex-Thamno-
ceris lacerata.
46.- Anasperochernes chilensis Beier, 1964.

Anasperochernes chilensis Beier, 1964, 67: 344-345, fig. 20.
Localidad típica: CHILE. Aconcagua: Zapallar.

Distribución: CHILE. Aconcagua: Zapallar.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. DY

47.- Anasperochernes debilis Beier, 1964.
Anasperochernes debilis Beier, 1964, 67: 345-347, fig. 21.
Localidad típica: CHILE. Aconcagua: Papudo.

Distribución: CHILE. Aconcagua: Papudo; Zapallar (Quebrada de Aguas
Claras); Costa (Quebrada de Córdoba, Dunas de Algarrobo).

Género PARACHERNES Chamberlin, 1931.
Ent. News. 42: 192,

48.- Parachernes auster Beier, 1964.

Parachernes auster Beier, 1964, 67: 349-350, fig. 23.
Localidad típica: CHILE. Chiloé: Isla de Chiloé (Chepu).
Distribución: CHILE. Chiloé: Isla de Chiloé (Chepu).

49.- Parachernes chilensis Beier, 1964.
Parachernes chilensis Beier, 1964, 67: 350-352, fig. 24.
Localidad típica: CHILE. Antofagasta: Paposo.

Distribución: CHILE. Antofagasta: Paposo, 10-15 m., bajo Heliotropium
sp. Euphorbia lactiflua y Eulychnia breviflora; Río Clarillo, 900 m.,
Lomas de Paposo al Norte de Taltal, 600 m., Tarapacá: Chiza, Quebrada de
Umayani, al Sur de Arica), ex—Tessaria absynthioides y Distichlis sp.;
Aconcagua: Costa (Quebrada de Córdoba).

50.- Parachernes subtilis Beier, 1964.
Parachernes subtilis Beier, 1964, 67: 347-349, fig. 22.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Batuco.
Distribución: CHILE. Santiago: Batuco, 550 m.

51.- Parachernes (Argentochernes) kuscheli Beier, 1955.
Parachernes (Argentichernes) kuscheli Beier, 1955, 4: 208-209, fig. 3.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández (Más a Tierra,
Plazoleta Yunque).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más a Tierra (Pla-
zoleta Yunque, 200 m.); Más Afuera (Las Chozas, 550 m., ex-Myrceugenia
schulze:).

99 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

Género ASTEROCHERNES Beier, 1955.
Rev. Chil. Ent. 4: 209, A

52.- Asterochernes kuscheli Beier, 1964.

Asterochernes kuscheli Beier, 1962, 1: 135 (nom. nud.); Beier, 1964,
67: 352-354, fig. 25.

Localidad típica: CHILE. Concepción: Cerro Caracol.

Distribución: CHILE. Valparaíso: Quebrada de Córdoba; Concepción
Cerro Caracol (Mirador Alemán), 100 m., bajo bosque heterogéneo con:
Cryptocarya alba, Nothofagus obliqua, Gevuina avellana, Aetoxicum pun-
tatum, Peumus boldus, Rhaphithammus spinosus, Aristotelia chilensis, Lith-
raea caustica, Persea lingue, Myrceugenella apiculata, Podanthus ovalifolius,
Lapageria rosea, Chusquea sp., Lardizabala biternata, Griselima scadens;
Río Bío - Bío, 500 m., bajo Cryptocarya alba, Peumus boldus, Aristotelia
chilensis, Francoa Pedunculata, Sophora tetraptera, Cassia sp., Bío - Bío:
El Abánico, 900 m., bajo Drimys winteri, Myrceugenella apiculata y No-
thofagus obliqua; Arauco: Isla Mocha, 400 m.

53.- Asterochernes “vittatus Beier, 1955.

Asterochernes vittatus Beier, 1955, 4: 210-212, fig. 4; Beier, 1957, b:
454.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández: Más a Tierra
(Miradero).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández: Más a Tierra

(Miradero, 500 m., ex-Nothomyrcia fernadezzana; Guindal de la Pólvora,
300 m.

Género PARAZAONA Beler, 1933.
Das Tierreich 58: 107, 142.
54.- Parazaona chilensis Beier, 1964.
Parazaona chilensis Beier, 1964, 67: 357-359, fig. 28.
Localidad típica: CHILE. Antofagasta: Paposo.

Distribución: CHILE. Antofagasta: Paposo, 250-300 m., bajo Lycium sp.
Nicotiana solanifolia, Croton collinus, Alona sp. y Senecio cachinalensis.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 23

55.- Parazaona kuscheli Beier, 1964.

Parazaona kuscheli Beier, 1964, 67: 356-357, fig. 27.
Localidad típica: CHILE. Tarapacá: Cuya (Río Camarones).
Distribución: CHILE. “Tarapacá: Arica, Cuya (Río Camarones), bajo
Baccharis petiolata var rotundifolia,.
56.- Parazaona pycta Beier, 1964.

Parazaona pycta Beier, 1964, 67: 354-356, fig. 26.
Localidad típica: CHILE. Tarapacá: Km. 10 W. Oasis de Pica.

Distribución: CHILE. Tarapacá: Km. 10 W. Oasis de Pica.

Género PSEUDOPILANUS Beier, 1957.
Rev. Chil. Ent. 5: 455.

57.- Pseudopilanus chilensis Beier, 1964.
Pseudopilanus chilensis Beier, 1964, 67: 362-364.
Localidad típica: CHILE. Llanquihue: Frutillar.

Distribución: CHILE. Coquimbo: Talinay, 800 m.; Cautín: 10 Millas
NW de Pucón; Llanquihue: Frutillar.

58.- PseudoPilanus echinatus (Ellingsen), 1904.

Chelifer (Trachychernes) echinatus Ellingsen, 1904, 18(480: 2.

Chelifer echinatus With, 1908, 18: 262.

Rhopalochernes echinatus Beier, 1932, 58: 142; Mello—Leitao, 1939,
4(17): 120; Mello—Leitao, 1939, 17: 617.

PseudoPilanus echinatus Beier, 1959, 1: 214. fig. 23; Beier, 1962, 1:
135; Beier, 1964, 67: 361-362.

Localidad típica:CHILE. Patagonia (sin indicar localidad precisa).
Distribución: CHILE. Aconcagua: Zapallar (Bosque El Tigre), ex-Tilland-

sia sp., Patagonia (sin indicar localidad); ARGENTINA. Neuquén: Lago
Curruhue Grande, ex-Araucaria araucana.

294. Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.
59.- Pseudopilanus fernandezianus Beier, 1957.
PseudoPilanus fernandezianus Beier, 1957, 5: 455-457, fig. 2.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más Afuera,
(Inocentes Bajos).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas e: Fernández, Más Afuera (Ino-
centes Bajos, 800 m.). e
60.- Pseudopilanus kuscheli Beier, 1964.

Pseudopilanus kuscheli Beier, 1964, 67: 359-361, fig. 29.
Localidad típica: CHILE. Concepción: Concepción.
Distribución: CHILE. Aconcagua: Zapallar (Bosque El Tigre); Santiago:
Río Clarillo, 900 m., ex—-Cryptocarya alba; Concepción: Concepción, bajo
Lithraea caustica, Quillaja saponaria, Peumus boldus y Myrceugenella api-
culata; Cerro Caracol (Mirador Alemán) 100 m., bajo CryPtocarya alba,
Notrofagus obliqua, Gevuina avellana, Aextoxicum punctatum, Peumus
boldus, Rhaphithammus spinosus, Aristotelia chilensis, Lithraea caustica,

Persea lingue, Myrceugenella apiculata, Podanthus ovalifolius, Lapageria
rosea, Chusquea ap. Lardizabala biternata, Griselinmia scadens.

Género DINOCHEIRUS Chamberlin, 1929.
Pan-—Pacific Ent. 5: 171.
61.- Donas ellas Beier, 1964.
Dinocheirus chilensis Beier, 1964, 67: 364-366, fig. 31.
Localidad típica: CHILE. Coquimbo: Mlapel; Aconcagua: Zapallar.

Distribución: CHILE. Coquimbo: Illapel; Aconcagua: Zapallar.

62.- Dinocheirus diabolicus Beier, 1964.
Dinocheirus diabolicus Beier, 1964, 67: 366, fig. 32.
Localidad típica: CHILE. Coquimbo: Bosque Fray Jorge.

Distribución: CHILE. Antofagasta: Tatal; ex-Copiapoa cinerea; Coquim-
bo: Fray Jorge, Ovalle.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 25

Género SIIGMACHERNES Béeier, 1957.
Rev. Chil. Ent. 5: 457.

63.- Stigmachernes skottsbergi Beier, 1957.
Stigmachernes skottsbergi Beier, 1957, 5: 457-460, fig. 3.
Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández (Más Afuera).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más Afuera (La
Correspondencia, 1.300 m.).

Género CHELANOPS Gervais, 1849.
In. Gay. Hist. Fis. Pol. de Chile 4: 13.

64.- Chelanops (Chelanops) chilensis Beier, 1932.

ChelanoPs chilensis Beier, 1932, 58: 178, fig. 186; Beier, 1933, 64:
335 OS
Chelanops (Chelanops) chilensis Beier, 1964, 67: 366-367.

Localidad típica: CHILE. Cautín: Panguipulli.

Distribución: CHILE. Cautín: Panguipulli, Villarrica.

65.- Chelanops (Chelanops) coecus (Gervais), 1849.

Chelifer (Chelanops) coecus Gervais, 1849, 4: 13, lám. 1, fig. 13.

Chelifer coecus Gotschlich, 1913, 6(1): 208.

Chelifer (Trachychernes) rotundimannus Ellingsen, 1910, 4: 379;

Beier, 1930, 23: 199, figs. 3 AB.

Chelanops rotundimannus Beier, 1932, 58: 177, fig. 185; Mello—
Leto 1939417 Lale

Chelanops coecus Beier, 1959, 1: 215; Beier, 1962, 1: 135; Joseph,

1927, 31: 53-56. | y

Chelanops (Chelanops) coecus Beier, 1964, 67: 367-368; Cekalovic,
O 7 o.

Localidad típica: CHILE. Llanquihue: Calbuco.

Distribución: CHILE. Ñuble: San Carlos; Cautín: 10 Millas NE de Pucón;
Km. 25 E. de Temuco; Valdivia: Valdivia; Osorno: Km. 10 E. de Puyehue,
Km. 18 W. de Purranque; Llanquihue: Los Riscos, Puerto Montt, Calbuco;
Aysén: Río Murta (Lago Buenos Aires), Chile Chico; Magallanes: Puerto
Eden (Isla Wellington); ARGENTINA. Neuquén: Pucará; Río Negro:
Lago Moreno, Lago Nahuel Huapí, Bariloche; Lago Puelo, Villa Mascardi,
Llao-Llao, Lago Gutiérrez, Laguna Morales, Lago F utaleuquén, ex-
Nothofagus dombeyi, Lago Menéndez; Chubut: Comodoro Rivadavia.

26 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 55, 1984.

66.- Chelanops insularis Beier, 1955.

Chelanops insularis Beier, 1955, 4: 214-215, fig. 6; Beier, 1957, 5:
460-463.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más a Tierra,
(Bahía Cumberland).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más a Tierra
Bahía Cumberland, 100 m., ex-Fagara mayu, Yunque, 750-900 m.).

67.- Chelanops kuscheli Beier, 1955.
Chelanops kuscheli Beier, 1955, 4: 212-213, figs. 5; Beier, 1957, 5: 460.

Localidad típica: CHILE. Valparaiso: Islas Juan Fernández, Más a Tierra,
(Plazoleta Yunque).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más a Tierra (Pla-
zoleta Yunque, 200 m., Bahía Cumberland, 100., ex-Fagara mayu).

68.- Chelanops (Chelanops) occultus Beier, 1964.

Chelanops (Chelanops) occultus Beier, 1964, 67: 368-370, figs. 33.
Localidad típica: CHILE. Coquimbo: Hacienda Illapel; Rinconada.
Distribución: CHILE. Coquimbo: Hacienda lllapel, Rinconada.

69.- Chelanops pugil Beier, 1964.
Chelanops pugil Beier, 1964, 67: 305-306, figs. 2

Localidad típica: CHILE. Valparaiso: Isla San Ambrosio (Tipos hembras
N9 2083 y 2084 y macho N% 2085, depositado en el Museo Nacional de
Historia Natural, Santiago).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Isla San Ambrosio, (Quebrada Grata).

70.- Chelanops (Neochelanops) patagonicus (Tullgren), 1900.

Chelifer patagonicus Tullgren, 1900, 21: 155, fig. 2; With, 1911,
18.297

Parazaona patagonicus Beier, 1932, 57: 144.

Chelanops (Neochelanops) exiguos Beier, 1932, 1: 135.

Chelanops (Neochelanops) Patagonicus Beier, 1964, 67: 370-371, fig. 34.

Localidad típica: CHILE. Magallanes: Tierra del Fuego.

Distribución: CHILE. Cautín: Puesco Bajo; Pucón, 100 m., ex-Nothofagus
sp.; Llanquihue: Los Riscos; Magallanes: Tierra del Fuego.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 27

71.- Chelanops (Neochelanops) fraternus Beier, 1964.
_Chelanops (Neochelanops) fraternus Beer, 1964, MITAD OS O
Eocalidad típica: ea. SL Talinay.

Distribución: CHILE. Coquimbo! Talinay 630. m., en “humus” bajo
Aextoxicum punctatum.

72.- Chelanops (Neochelanops) michaelseni (Simon), 1902.

Chelifer Michaelseni Simon, 1902, 2: 44-45; With, 1911, 18: 282,
lám. 30, figs. 22 ac. 0:05 al a
Parachernes michaelseni Beier, 1932, 57 118.

Parachernes (Parachernes) michaelseni Mello—Leitao, 1939, 4(17): 120;
Mello-Leitao, 1939, 17: 616. ?

Chelanops (NeochelanoPs) michaelseni Beier, 1964, 67: 373- 375, Hg,
36; Cekalovic, 1976, 37: 18-19.

Localidad típica: CHILE. Masallanes: “Punta AER Agua lec 1
de Tierra del O pd Patagonien; ARGENTINA. Tierra a Aa
UsHuaa 20

Distribución: CHILE. Magallanes: Península de Brunswick (Agua Fresca,
Punta Arenas, Chorrillo de la Piedra, Los Robles); Tierra del Fuego
(Estancia Rosario, Bahía Inútil, Estancia Cameron) Cueva del Milodón
(Ultima Esperanza); Puerto Williams (Isla Navarino); Monte Alto (La-
guna Kerber); BRASIL. Sur del Brasil (sin indicar localidad); ARGEN-
TINA, Tierra del Fuego: Estancia Viamonte, Ushuaia. y

Género GIGANTOCHERNES Beter, 1933:
Zool. Jahr. Syst. 64: 457.
73.- Gigantochernes franzi di a MOTA

Gigantochernes franzi di E O 7iZe 31(82): 33— 38, no 4-5, figs.
19-28.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Quebrada La Plata. ,

Distribución: CHILE. Santiago: Quebrada La Plata.

74.- Giganthochernes hoffi di Castri, 1972.

- Giganthochernes poa di OT a 31(82): 25-33, láras: l- 3, figs.
1-18.

28 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Localidad típica: CHILE. Santiago: Quebrada La Plata.
Distribución: CHILE. Coquimbo: Camino de Illapel a Combarbalá; San-
tiago: Quebrada La Plata, ex-Peumus boldus, Curacaví, (Fundo Chorri-

llos), Til-Til, ex-Peumus boldus; Colchagua: Sierra de Bellavista, ex-
Peumus boldus; Curicó: Los Queñes, ex-Peumus boldus.

FAMILIA CHELIFERIDAE Hagen, 1879.

Género CHELIFER Geoftroy, 1762.
Hist. Insect. 2: 617.

75.- Chelifer cancroides (Linnaeus), 1758.
Acarus cancroides Linnaeus, 1758, Syst. Nat. Ed. 10: 616.
Localidad típica: EUROPA, SUECIA.

Distribución: COSMOPOLITA; CHILE. Magallanes: Bahía Orange;
vecindades del Cabo de Hornos. NOTA. No existe ninguna otra infor-
mación para otras localidades chilenas.

Género PROTOWITHIUS Beier, 1955.
Rev. Chil. Ent. 4: 216-217.

76.- Protowithius fernandezianus Beier, 1955.
Protowithius fernandezianus Beier, 1955, 4: 217-218, fig. 7.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más Afuera
(Las Chozas).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más Afuera (Las
Chozas, 550 m., ex-Myrceugenia schulz1).

77.- Protowithius robustus Beier, 1955.

Protowithius robustus Beier, 1955, 4: 218-220, fig. 8; Beier, 1957,
5: 463.

Localidad típica: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más a Tierra
(Plazoleta Yunque).

Distribución: CHILE. Valparaíso: Islas Juan Fernández, Más a Tierra (Pla-
zoleta Yunque, 200 m., Bahía Cumberland, 200 m.).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 29

CLASE ARACHNIDA Lamarck, 1801

ORDEN PALPIGRADI Thorell, 1888.
Familia EUKOENENIIDAE Boerner, 1901.

Género EUKOENENIA Boerner, 1901.
Zool. Anz. 24: 551.

1.- Eukoenenia grassí Hansen, 1901.

Eukoenenia grassii Hansen, 1901, 22: 193-240, pl. 3: Condé, 1974,
11(3): 450-455, figs. 1-3.

Localidad típica: PARAGUAY. Tacurú Pucú (Alto Paraná).

Distribución: CHILE. Coquimbo: Fray Jorge, 620 m., ex-Trichocerus sp»,
Puya sp.; Valparaíso: Cerro El Roble, 2.200 m., ex-Nothofagus sp.

2.- Eukoenemia mirabilis Grassi, 1886.

Eukoenemia mirabilis Grassi, 1886; Silvestri, 1905, 2: 239: Remy,
1948, (29), (3): 254-259; Remy, 1957, 36: 335-339; Condé, 1974, 2D
Condé, 1974, 11(3): 449; Condé, 1975, 82(3): 507, Condé, 1976, 83(3): 747-
748; Condé, 1977, 84(3): 665; Condé 1979, 86(1): 167; Condé, 1979, 86(4):
901.

Localidad típica: EUROPA. Islas del Mediterráneo.
Distribución: CHILE. Santiago: San Bernardo; FRANCIA, ITALIA, MA-

RRUECOS, GRECIA, ISLA MALTA, CRETA, ALGERIA, LIBANO,
MAGADASCAR.

Género PROKOENENTA Silvestri, 1913.
Bull. Lab. Zool. Gen. Portici 7: 211-217.

3.- Prokoenenia chilensis (Hansen), 1901.
Koeneniodes chilensis Hansen, 1901, 22: 193; Remy, 1962, 1: 281.
Prokoenenia chilensis Condé, 1974, 11(3): 449.

Localidad típica: CHILE. Valparaiso: Viña del Mar.

Distribución: CHILE. Valparaíso: Viña del Mar.

30* Bol. Soc. Biol. Concepción; Chile. Tomo 55,” 1984.
CUADRO RESUMEN DE LOS GRUPOS TAXONOMICOS DE
PSEUDOSCORPIONES Y PALPIGRADI.
Orden Familia Género Especie
PSEUDOSCORPIONES Chthoniidae 7 14
Gymnobisiidae 2 Y
Ideoroncidae 2 2
_Menthidae . di 1
Olpiidae 4 9
Garypidae 2 3
Cheiridiidae 5) 7
Chernetidae - Da o ¿dia
Cheliferidae 2 3
| De era 10 33 ci
PALPIGRADI Eukoeneniidae 2 3
1 lili 2 3

COORDENADAS DE LOS LUGARES GEOGRAFICOS DE CHILE DONDE SE HA
CAPTURADO PSEUDOSCORPIONES Y PALPIGRADI

Aeñas Claras (Canal de) :'
Agua Fresca -
Algarrobo

Arica

Azapa (Valle de)
Batuco

Bellavista (Sierra de)
Bío - Bío (Río) e
Butalcura
Cabrería (Estero)
Calbuco

Caleta (Río)
Camarones (Río)
Cameron (Estancia)
Caracol (Cerro)
Carrizal Bajo

Chepu (Río)
ChilesiChicoo%i ¿veros
Chiza (Quebrada e]
Clarillos (Río)
Concepción

Córdoba (Quebrada)

Cueva del Milodón (Gruta)

332398;

LOS
SII

18928"S;
18935'S;

-33915'S;

32946'S;
37930'S;
42012'5;

INODZASS

y

41946'S;
DIOS:
19900'S;
53940'"S;
36%50"S;
28205'S;

»"42903'S;

46933'S;
19912"S;
US

36950'S;

33926'S;
SIS

70957 W
71200"W"
71939 W"
70920'W
70917"W
70949"W
71908"W
72240" W
73944 'W
73:09'W
73208"W
71935'W
69247"W
74923" W
73902 "W
71911 'W

74900"W"

71944 W
70900'W
70938"W
73902W
71941 'W
72935'W

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Cumberland (Bahía)
Curacaví (Aldea)

Cuya (Hacienda)

Edén (Puerto)

El Abanico

El Portillo

El Roble (Cerro)

El Tigre (Quebrada)
El Tofo

Farellones

Fray Jorge (Parque Nacional)
Frutillar

Guanaqueros (Bahía)
Guindal de la Pólvora
Huasco (Puerto)
Illapel (Hacienda)
Inocentes Bajos (Quebrada)
Inútil (Bahía)

La Correspondencia

La Piedra (Chorrillo de la)
La Plata (Quebrada)
Las Chozas

Las Palmas (Hacienda)
Los Andes

Los Choros

Los Maitenes

Los Riscos

Los Robles (Lugarejo)
Más Afuera (Isla)

Más a Tierra (Isla)
Mocha (Isla)

Monte Alto

Monte Amargo

Murta (Río)
Nahuelbuta (Cordillera)
Orange (Bahía)

Ovalle

Panguipulli

Paposo

Papudo (Puerto)
Península (Puesto La)
Pica (Oasis)
Pitrufquén

Polpaico

Pucón

Puerto Cristal

Puerto Montt

Puesco. Bajo (Lugarejo)
Punta Arenas

33937'S;
33925'S;
19209'S;
49%08'S;
379220'S;
32950'S;
32059'S;
IZLVITÓS;
299298;
33921*S;
30934'S;

-41908'S;
-30910'S;

33945'S;
28927'S;
31936'S;
33946'S;
55910'S;
33945'S;
DS:
33208'S;
33945'S;
34911'S;
32950'S;

29919'S;-

34920'S;
39945'S;
539048;
33945'S;
3231 9;
38920'S;
51948'S;
2nNe2TeS;
46920'S;
3794 7'S;
55931'S;
30936'S;
39945'S;
25905'S;
32930'S;
51915'S;
20930'S;
38959'S;
33910'S;
39916'S;
46932'S;
41928'S;
39932'S;
53910'S;

ES

78%49"W
71208"W
70911 "W
714225"W
711931" W
70208"W
71208"W
719226"W
71916"W.
70220"W.
71911 'W
73200"W
11929'W
80951"W
T1215W
71208"W
80943"W,
69240"W
80951"W
7112902"W
AUS
80%51"W
71914'W
70937'W
1122 PW-
70%26"W
72236"W
70949"W
80951"W
78252"W
732956"W
70942"W
70943 "W
72250"W
73200"W
68203"W
711913'W
72212W
70925"W
71930"W
712241 'W
699221"W
12238"W
70953 "W
71948"W
72220"W
72256"W
71933 W
70054 "W

32 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Purranque --- 409256'S; 73209"W
Puyehue 40941'S; 72273 W
Quilantó 41900'S; 72253"W
Rinconada 33931"; 50946"W
Rosario (Estancia) DO VAN
San Ambrosio (Isla) 26921'S; 7994 7"W
San Bernardo IIS USED
San Carlos 369255; 11257 W
Santiago JISZIAS: ORO
Serena 299048; dl LOW
Talinay e 30930'S; 71%41"W
Taltal | le 2002055 10330 0
Tamarugal (Pampa del) 21200'S; 69230"
Teatinos (Punta) re i29049 "Sa TSZO MV
Temuco 38245'S; 72235"W
Tierra del Presa (Isla) 53200"S; 69200"W
Umayani (Quebrada de) 19205'S; 699%48"W
Valdivia 39949'S; 13914 W
Vicuña 30902'S; 70944 "W
Villarrica 39917'S; 72213"W
Viña del Mar 33208'S; 71935"W
Williams (Puerto) 54056'S; 679238"W
Yunque (Plazoleta) 33938'S; 78251"W
Zapallar 32932'S; 71230"W
pci AA A PRA A AAA AI
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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 37 - 46, 1984. 37

ADICIONES A LOS GENEROS AUSTROSYNAPHA TONNOIR,
1929 Y TETRAGONEURA WINNERTZ, 1846, DE CHILE
(DIPTERA, MYCETOPHILIDAE)

Additions to the genera Austrosynapha "Tonnoir, 1929 and Tetragoneura
Winnertz, 1846, from Chile. (Diptera, Mycetophilidae).

JOSE PEDRO DURET*

RESUMEN
Se entrega información adicional sobre los géneros Austrosynapha Tomnoir,
1929 y Tetragoneura Winnertz, 1846 procedentes de Chile. Se describen seis nuevas
especies, una de Austrosynapha y cinco de Tetragoneura y, se añaden otras informa-
ciones sobre la distribución de las especies ya conocidas. Las seis nuevas especies son:
Austrosynapha (A.) pseudolamellata sp. n., Tetragoneura lanfrancoae sp. n., T. cauti-
nensis sp. n., T. artigasi sp. n., T. mallecoensis sp. n. y T. Puyehuensis.

ABSTRACT
Additional data to genus Austrosynapha Tonnoir, 1929 and Tetragoneura
Winnertz, 1846, from Crile. (Diptera, Mycetophilidae) One new species of the genus
Austrosynapha and five of ¿he genus Tetragoneura are described and, additional data
on the distributional ranges of already known species are given. The six new species
are: Austrosynapha (A) pseudolamellata, sp. n, Tetragoneura lanfrancoae, sp. n., T.
cautinensis, sp. M,, T. artigasi, sp. M., T. mallecoensis sp. n. and T- Puyehuensis, sp. n.

Keywords: Diptera. Mfcetophilidae. Austrosynapha. Tetragoneura. “Taxonomy. Chile.

INTRODUCCION

Continuando con el estudio de los géneros Austrosynapha
(Duret, 1973-74-77-80) y Tetragoneura (Duret, 1976-80-82) de la Patagonia,
describimos ahora seis especies nuevas, una del primer género y cinco del
segundo. Incluimos, también, localidades no citadas aun par las especies
ya conocidas.

*Dirección del autor: Billinghurst 2559 - 52 Piso, 1425, Buenos Aires, República Argentina.

38 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

MATERIALES Y METODOS

Los ejemplares estudiados fueron capturados por nuestros cola-
boradores, el $5r. Luis E. Peña en el centro y sur de Chile y por la Lic.
Prof. Dolly Lanfranco en la región magállanica, a quienes agradecemos
su valiosa ayuda. Aclaramos que cuando no se designe colector el ejemplar
fue obtenido por el Sr. Peña.

El método de trabajo seguido ha sido el que indicáramos en las
publicaciones anteriores. “Todas las determinaciones están basadas en el
aparato genital del macho. Los dibujos los hizo el autor en una misma
escala y los tipos se conservan en su colección particular.

Austrosynapha Tonnoir, 1929

Subgénero Austrosynapha s. str. Duret, 1980.

Nuevas localidades para especies ya conocidas.

Il. A. dentata Freem., 1951. Malleco, Cordillera de Nahuelbuta, XIl-
l 3. Primera cita para Chile.

2. A. forcipata Freem., 1951. Magallanes, archipiélago Cabo de Hornos,
Bahía Scourfield, 11-1980, (Lanfranco col.), 1 3.

3. A. 1tbarrai Duret, 1973. Maileco, Curacautín, río Blanco, 11-1964, 1 S.

4. A. martinezi Duret, 1973. Ñuble, cordillera Chillán, Shangri-lá,
1-1979, 1600 m, 1 3. Malleco, cordillera Las Raíces, 11-1980,
4 3. Cautín, Totten, 11-1979, 1 ¿. Magallanes, archipiélago
Cabo de Hornos, isla Bayley, 11-1980, (Lanfranco col.), 1 8.

. Penar Duret, 1977. Osorno, Puyehue, Aguas Calientes, XIL-1981,
DÍ

6. A. proseni Duret, 1973. Llanquihue, N. Correntoso, El Chingue,
1-1980, 1 3. Primera cita para Chile.

. pseudoreducta Duret, 1977. Cautín, W. Temuco, La Selva, 1 $,
y Chamaco, X11-1981, 1 3. Osorno, Pucatrihue, H-11-1980, 6 8
y la Picada, 1-1980, 1 3; Puyehue, Aguas Calientes, XIIL-1981,
1 3. Llanquihue, N. Correntoso, Hornohuinco, XII-1981, 1 3
y el Chingue, 1-1980, 1 S.

8. A. reducta Freem., 1951. Maule, Tregualemu, XII-1981, 1 3. Ma-
lleco, cordillera Las Raíces, Lonquimay, 1500 m, XII-1967,
1 5. Osorno, Pucatrihue, 11-1980, 1 2; Puyehue, Aguas Calientes,
XIL-1981, 1 3. Llanquihue, N. Correntoso, El Chingue, 1-1980,
ISA

9. A. schajouskoyi Duret, 1973. Cautín, W. Temuco, La Selva, XII-
1981, 4 3. Osorno, Puyehue, XIL-1981, 1 8.

10. A. spinifera Freem., 1951, Santiago, Cuesta El Melón, W. La Calera,
XI-1981, 1 %. Maule, Constitución, El Pantanito, XI-1981, 1 5
y Tregualemu, XII-1981, 5 3. Malleco, cordillera Las Raíces,
11-1980, 1 3 y cordillera Nahuelbuta, 1-1982, 1 3. Cautín, W.
Temuco, Chacamo, XII-1981, 1 3.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 39

11. 4. truncata Freem., 1951. Osorno, Pucatrihue, 11-1980, 1 4.

12. A. unguiculata Freem., 1951. Llanquihue, N. Correntoso, El Chin.
gue, 1-1980, 1 3.

13. A. yivoffi Duret, 1973. Malleco, cordillera Nahuelbuta, 1-1982, 1 8,
Osorno, Puyehue, Aguas Calientes, XI1-1981, 1 ¿.

ESPECIE NUEVA:

Austrosynapha (Austrosynapha) pseudolamellata sp. n.
(fig. 1-3).

Esta mueva especie tiene sus caracteres externos muy semejantes
a A. lamellata Freem., 1951, pero ambas se apartan fácilmente exami-
nando las genitalias. La figura N* 144 de Freeman reproduce fielmente
la genitalia de su especie y como nosotros tenemos numerosos ejemplares
de A. lamellata hemos podido comparar ambas genitalias. La nueva es-
pecie se caracteriza por su dististilo sin los fuertes dentículos del borde
interno que presenta la especie de Freeman; la forma del edeago es
diferente y el tergito IX es más ancho y tiene el borde distal algo oscure-
cido. Además, su abdomen es casi negro y brillante, en cambio en A. lame-
llata el tegumento es más claro y Opaco.

Material estudiado: el macho holotipo NY 14464, de Chile, Malleco, cor-
dillera Las Raíces, 20-11-1980, (L.E. Peña col.).

Tetragoneura Winnertz, 1846.

Nuevas localidades para especies ya conocidas.

l. T. ardeiceps Freem, 1951. Magallanes, archipiélago Cabo de Hornos,
Bahía Scourfield, 11-1980, (Lanfranco col.), 16.

2. T. argentina Duret, 1976. Cautín, W. Temuco, La Selva, XII-1981,
ZO

3. T. bachmanni Duret, 1976. Malleco, Cordillera Nahuelbuta, Los
Gringos, 1-1982, 2 3.

4. T. bejaranoz Duret, 1976. Maule, 'Tregualemu, XIL-1981, 2 8.
Osorno, Puyehue, Aguas Calientes, XIL-1981, 5 3. Isla Chiloé,
Tepuhueco, XIL-1981, 1 8.

5. T. bifida Freem., 1951. Osorno, W. Temuco, La Selva, XII-1981,
2 3. Llanquihue, N. Correntoso, El Chingue, 1-1980, 5 $. Isla
Chiloé, N. Quellón, Tuequetrumao, XII-1981, 1 3.

6. T. cordillerana Duret, 1982. Malleco, Lonquimay, Las Raíces, 1-

[SD O.

7. T. cornuta Duret, 1982. Osorno, Puyehue, Aguas Calientes, XI
ION E

8. T. galea Freem., 1951. Osorno, Puyehue, Aguas Calientes, 1-1982,
DS

9. T. hePperi Duret, 1976. Malleco, Nahuelbuta, Piedra del Aguila, II-
1979, 1 ¿. Primera cita para Chile.

40 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984,

1U. 4. osornoensis Duret, 19oZ. lvaneco, Cordillera Nahuelbuta, 1-1994,
1 ó. Usorkmo, ruyehbue, Aguas Lauentes, All-1951, 1 Sd. isia
Chuoé, Lepunueco, XAli-1Yol, 1 83.

Li. 4. paracnuena Duret, 1992. USOrno, Fuyehue, Aguas Calientes, Ali—
UI

12. L. pecunava ricem., 1951. Cautin, W. “Lemuco, La Selva, X11-1981,
lg y Uhacamo, X11-1981, Z 3. Usorno, Puyehue, Aguas Ca-
lientes, A11-1981, 7 ó.

13. Y. penas Duret, 19/0. ¡Mauie, lregualemu, A11-1981, 1 3.

14. 1. pseudochivena Duret, 1552. Usorno, Puyehue, Aguas Calientes,
XA1i-1981, 2 8.

15. 1. sergior Duret, 1976. Malleco, Nahuelbuta, 1-1932, 2 6.

lo. Y. semiliina rreem., 1904 (ex semitis Fr. 1951). Llanquihue, N. Co-
rrentoso, Hornonmuimco, Xli-1981, 1 ¿. Maule, “Tregualemu,
Ali-1951, 1 3. Arcmipiéiago Cabo de Hornos, Isla bayly, 11
1980, 1 $ (Lanfranco, col.).

17. YT. simpuicipes rreem., 1951. Osorno, Puyehue, Aguas Calientes,
XJ]11-1981, 1 8.

18. 17. sinuata Freem., 1951. Osorno, Puyehue, Aguas Calientes, XIL-
1981, 1 3. Archipiélago Cabo de Hornos, isla Bayly, 11-1980,
2 ¿ y Bahía Scourfield, 11-1930, 2 3, (Lanfranco, col.).

19. T. stanges Duret, 1980. Malleco, Nahuelbuta, 1-1982, 1 3.

ZU. 1. tivialis Freem., 1951. Archipiélago Cabo de Hornos, isla Bayly,
119850, 1 3, (Lanfranco, col.).

21. T. viana: Duret, 1976. Osorno, Puyehue, Aguas Calientes, XIL-1981,
Se

ESPECIES NUEVAS:
Se presentan ordenadas de acuerdo a su probable ubicación en
la clave que estamos preparando, ampliando la de 1976.

Tetragoneura lanfrancode sp. n.
(Fig. 45).

Color general oscuro; tibia media con órgano sensorial pequeño,
celda radial pequeña.

Macho. Longitud del ala 2,8 mm.

Cabeza. Oscura; antena con todos los segmentos cortos.

Tórax. Muy oscuro, pelos con reflejos dorados. Escutelo con dos setas
largas y dos menores.

Patas. Coxas totalmente castaño negro; pelos de la C.I. con reflejos bron-
ceados. Trocánteres claros. Fémures castaño oscuro, algo amarillentos
en su parte media; F. [II con el tercio distal oscuro. "Tibias media y pos-
terior sin peines apicales; TT. II con órgano sensorial pequeño, sin en-
erosamiento tibial; T. MI con 5 setas anteriores y 5 dorsales.

Álas. Con un débil tinte castaño en las zonas distal y posterior; Subcostal
corta; prolongación de la Costal 0,5; celda Radial pequeña y rectangular,

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 41

mide 0,3 de r-m; R, apenas mayor que r-m; tallo de la horquilla anterior
y base de M, y M» algo atenuados y sin macrotriquias; horquilla Cu larga,
apenas distal de la base de r-m; la vena Anal alcanza la base de la hor-
quilla Cu. Balancines con ápice de ¡a cabezuela oscura, el resto claro.

Abdomen. Oscuro con pilosidad dorada.

Genitalia. (Fig. 4-5). Color general marrón claro. Lóbulos del basistilo
bien separados en la cara esternal. Farosoma con apédices largos.

MATERI/AL ESTUDIADO
_Dos machos. Holotipo N? 14135 y paratipo N% 14190 de Chile,
Malleco, cordi1era Nahuelbuta, 1300 m, 1-1982 (Peña col.).

DISCUSION

1. lanfrancoae sp. nm. por los caracteres generales sería próxima
a 1. tibialis Freem., 1951, pero esta especie tiene la tibia media engrosada
y con un órgano sensorial grande y su genitalia carece de los largos fila-
mentos que posee la sp. n.

Tetragoneura cautinensis sp. n.
(Fig. 6-8).

Especie pequena; tibia media con órgano sensorial; celda Radial
presente; tibias l1 y 111 sin peine distal; cuerpo oscuro y patas amarillas.
Macho. Longitud dei ala 2,1-2,3 mm.

Caveza. Clipeo oscuro; partes bucales y palpos amarillo claro. Occipucio
negro, aigo brillante, pe.0s Oscuros. Antenas oscuras, torus con ápice claro;
Hlagelos con segmentos cortos y pubescencia dorada pálida.

LOTUx. INegro, con escaso poien ceniciento y pelos cortos oscuros con
retiejos dO1adOs. ESCULEIO COM UOS peros negros largos y dos más cortos.
rleuras con escaso polen.

Patas. Amarinjentas. Goxas con pequena area oscura basal, mayor en la
U. 141. 1TOCalnteres parcia./mente oscureciuos. rémures con el borde ventral
oscurecido; E, i-14 con pequenas manchas apicales y EF. 111 con todo el
ápice oscurecido. 11bla meura COM El Organo sensorial chico (0,2), Oscuro.
Setas tibiales cortas; 1. 111 con 8 ant. y 14-19 dors.

4tas. Con debil tinte ahumado diruso; pubcostal gruesa y corta; prolon-
gación de la Costa U,/; celaa Radial presente, menor que r-m, pero de
tamano variabie de U,Z a U,0; K, menor que rm (0,7); horquilla anterior
con talio atenuado y macrotriquias; ápices de M, y M2 muy atenuados
cerca del borde alar; horquilla posterior poco basal de la horquilla ante-
rior; la vena Anal termina cerca de la horquilla Cu. Balancines amarillo
claro.

Abdomen. Oscuro y pelos con reflejos claros.

Genttalia. (Fig. 6-8) marrón claro, oscurecida en el borde distal del basis:
tilo y en su apófisis central. Dististilo ancho, excavado en su cara interna,
con un lóbulo mebranoso en su borde esternal y un ápice cónico; éste y
los bordes están oscurecidos.

49 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

MATERIAL ESTUDIADO

Cuatro machos, todos de Chile, Cautín, W. Temuco, La Selva,
700. m, XI?1981 (L.E. Peña col.). Holotipo N? 14146 y paratipo los
restantes.

Observación: La celda Radial en dos ejemplares mide, aproximadamente,
la cuarta parte de r-m y en los otros dos la mitad (0,506).

DISCUSION

T. cautinensis sp. m. por los caracteres generales y su tibia media
con órgano sensorial pequeño se aproxima a T'. osornoensis Duret, 1982,
pero sus genitalias son muy diferentes

Tetragoneura artigas! sp. n.
(Fig. 9-10).

Cuerpo oscuro, patas amarillas; celda Radial pequeña; tibia pos-
terior sin peine apical; falta la tibia media (órgano sensorial?).

Macho. Longitud del ala 2,5 mm.

Cabeza. Clipeo oscuro; partes bucales y palpos amarillentos. Occipucio
negro, opaco, algo polimoso, pelos cortos dorados. Antenas oscuras; torus
más claro en el ápice; segmentos del flagelo cortos.

Tórax. Mesonoto opaco, negro, polen escaso y pelos cortos dorados. Es-
cutelo, postnoto y pleuras castaño negro con escaso polen grisáceo.

Patas. Coxas amarillentas, oscurecidas en la base, más en la C. II (0,3);
coxa anterior con pelos dorados. Faltan las patas anterior y media. T'rocán-
teres oscurecidos. Fémur posterior amarillento, oscurecido en la mitad
basal del borde ventral y con una mancha distal grande. “Tibia posterior
con 8 setas ant., 12-14 dors. y 9-10 post. pequeñas y distales.

Alas. De forma alargada, ahumadas débilmente en las vecindades de los
bordes distal y posterior; Subcostal muy corta; prolongación de la Costal
0,6; celda Radial chica, rectangular, mide 0,3 de r-m; vena R, igual a la
mitad de r-m; tallo de la horquilla anterior casi ausente, pero con macro-
triquias, sus ramas desaparecen cerca del borde alar; horquilla Cu bien
basal de la horquilla M, su base está casi a nivel del ápice de r=m; vena
Anal atenuada, se aproxima a la base de la horquilla Cu. Balancines
amarillo claro.

Abdomen. Oscuro, con pelos claros.

Genitalia. (Fig. 9-10) marrón clara, con refuerzos quitimosos oscuros.
Basistilo con sus lóbulos separados en la cara esternal, sólo se unen en la
base. Dististilo ancho en la base y algo excavado en la cara interna de
su parte distal. Falosoma sin filamentos.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 43

MATERIAL ESTUDIADO

El macho holotipo N% 14848, de Chile, Malleco cordillera Las
Raíces, 1700 m, IM1-1979 (L. E. Peña col.). Dedicamos la especie al emi-
nente dipterólogo Dr. Jorge N. Artigas, presidente de la Sociedad de
Biología de Concepción, Chile.

DISCUSION

Al holotipo de 1. artigasi sp. m. le faltan las tibias medias des-
conociéndose si llevan un órgano sensorial, pero su genitalia es lo sufi-
citemente típica como para separarla de las otras especies patagónicas
conocidas. Por sus caracteres generales y los elementos de su genitalia la
ubicamos provisoriamente en el grupo de 7. simillina Freem., 1954 (ex
sumilis Freem., 1951), especialmente vecina a T. cautimensis sp. n. o a
1. mallecoensis sp. n.

Tetragoneura mallecoensis sp. n.

(Fig. 11-12).

Especie pequeña; celda Radial chica; tibia cedia con órgano sen-
sorial grande; cuerpo oscuro, patas amarillentas.
Macho. Longitud del ala 2,1 mm.

Cabeza. Clipeo oscuro, partes bucales y palpos amarillo claro. Occipucio
negro, pelos cortos oscuros. Antena oscura, torus amarillento; flagelo con
segmentos cortos.

Tórax. Mesonoto negruzco, con una delgada capa de polen ceniciento y
pelos cortos oscuros. Escutelo oscuro com dos setas negras largas y dos
menores (0,25). Postnoto castaño oscuro, algo polinoso lateralmente. Pleu-
ras castaño Oscuro.

Patas. Amarillo claro con manchas oscuras. Coxas I-II con pequeñas
manchas basales; €. HI con una mancha mayor; C. 1 con pelos dorados
claros. Fémures oscurecidos en el borde ventral, además, F. I11 con una
mancha oscura apical. “Iibia II com un órgano sensorial grande (0,3);
tibia posterior con 6 setas ant. y 12 dors.

Alas. Muy débilmente ahumadas; Subcostal muy corta; prolongación de
la Costal (0,75); tallo de la horquilla anterior casi ausente, pero con
macrotriquias; horquilla Cu apenas basal a la horquilla M; vena Anal
atenuada, termina cerca de la horquilla posterior. Balancines amarillo claro.

Abdomen. Con tegumento y pelos oscuros.

Genitalia. (Fig. 11-12). Marrón claro, con refuerzos quitinizados más
oscuros. Basistilo con sus lóbulos casi totalmente unidos en su cara esternal,
excepto una pequeña área centro-—distal. Dististilo ancho en la base, adel.
gazado y excavado en la cara imterna de la parte distal. Falosoma sin
filamentos.

MATERIAL ESTUDIADO
El macho holotipo N% 14320, de Chile, Malleco cordillera de
Nahuelbuta, Los Gringos, 1300m, 6-1-1982 (L. E. Peña col.).

44 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984,

DISCUSION

T. mallecoensis sp. n. como la especie anterior pertenecen al
grupo de T. simillina, pero se distinguen por la genitalia, especialmente
sus edeagos y falosomas.

Tetragoneura puyehuensis sp. n.
(Fig. 13-14).

Especie de tamaño mediano; tibia media con órgano sensorial
pequeño; ala sin celda radial; cuerpo castaño negro, patas amarillentas.
Macho. Longitud del ala 2,8 mm.

Caveza .Clipeo y partes bucaies marrón oscuro; palpos claros, con el úl-
timo segmento oscuro. Occipuicio negro, opaco, con pelos dorados. Ante-
nas cortas, Oscuras; torus con el ápice más claro; el primer segmento del
flagelo poco más largo que ancho.

T'orax. Marrón muy oscuro, opaco, con escaso polen ceniciento. Mesonoto
con la sutura anterior clara, pei0s dorados y espacio pre—escutelar con
dos setas largas doradas.

Patas. Coxas amarilias; C. 1. con pelos dorados; C. I-II con pequeñas
manchas oscuras basales; C. 114 con débil tinte castaño apical. “Lrocán-
teres Oscuros. Fémures algo oscurecidos en la base, borde ventral y ápice;
F. 111 con nítida mancha oscura distal (0,25). “libias II—111 sin peine apical;
''. 11 con un órgano sensoria: pequeno; “1. III con 6-7 setas ant. y 6—7
dors.

Alas. Con un suave tinte castaño; Subcostal larga (0,3 de la R); prolon-
gación de la Costal 0,6; celda Radial ausente; r-m y R, de longitud
semejante; horquilla anterior con tallo y base de M, y Ma: atenuados y
sin macrotriquias; horquilla Cu larga, poco distal de la base de rm;
Anal atenuada. Balancines amarillentos, mitad distal de la cabezuela
castaño claro.

Abdomen. Castaño oscuro con pelos dorados.

Genitalia. (Fig. 13-14) marrón claro. Basistilo con sus lóbulos separados
en la cara external, dejando entre ellos un espacio estrecho. Dististilo
con ápice oscurecido. Falosoma sin filamentos.

Figuras:

Austrosynapha pseudolamellata sp. n.: 1, genitalia, retirado el tergito IX, vista dorsal;
2, dististilo; 3, tergito IX (sin los cercos). ,
Tetragoneura lanfrancoae sp. n.. 4, genitalia, vista dorsal; 5, tergito IX.
Tetragoneura cautinensis sp. n.: 6, genitalia, vista dorsal; 7, ditistilo aislado, cara
externa; 8, tergito IX. T. artigasi sp. n.: 9, genitalia, vista dorsal; 10, tergito IX.
Tetragoneura mallecoensis sp. n.: 11, genitalia, vista dorsal; 12, tergito IX, T. Puye-
huensis sp. n.: 13, genitalia; 14, tergito IX.

46 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

MATERIAL ESTUDIADO

Dos machos. Holotipo N?% 14129 de Chile, Malleco, cordillera
Nahuelbuta, Los Gringos y paratipo N% 14202 de Osorno, Puyehue,
Aguas calientes, ambos 1-1982 (L. E. Peña leg.).

OBSERVACIONES
El paratipo tiene patas más claras y apdomen castaño; tergitos
Il a IV con áreas laterales más claras y banda oscura apical.

DES CS TON

T. puyehuensis sp. n. está muy próxima a T. nigripalpis Freem.,
1951, pero la sp. n. tiene coxas y balancines amarillentos y dististilo y
edeago diferentes

BIBLIOGRAFIA

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British Museum, London, 138 pp.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 47-72, 1984. 47

CHILEAN CRIBRIMORPHA (BRYOZOA CHEILOSTOMATA)*

Cribrimorfos chilenos (Bryozoa cheilostomata)

HUGO I. MOYANO G.**

ABSTRACT

A structural and systematic study on the Bryozoa Cheilostomata Cribrimorpha
inhabiting Chilean waters is presented. Thus, the following species have been analized:
Cribralaria labiodentata Moyano, 1983 and Cribrilaria paschalis Moyano, 1973 from
Easter island, Cribrilaria innominata (Couch, 1844) from Juan Fernández Archipe-
lago, Bellulopora bellula (Osburn, 1950) from Central Chile, Jolietina latimarginata
(Busk, 1884) and Parafigularia magellanica (Calvet, 1904) from the southernmost
Chilean archipelagos, and the antarctic species Cribrilina projecta Waters, 1904,
Membraniporella antarctica Kluge, 1914 and Figularia spatulata (Calvet, 1909).

The new genus Parafigularia is proposed to include Membraniporella mage-
llanica Calvet, 1904, on account of its trilocular zoarial modules being composed of
an autozooid, an avicularium and a distalmost kenozooid.

Tt is proved that the costate frontal secondary wall of Bellulopora bellula
is made up of “umbonuloid costae” issuing from marginal dietellae other than those
communicating neighbouring zooids.

SEM photographies and drawings are provided to show the different zooidal
structures.

Keywords: Bryozoa Cheilostomata. Systematics. South - Eastern Pacific.

RESUMEN

Se presenta un estudio sistemático y estructural de los Bryozoa Cheilostomata
Cribrimorpha que se encuentran en aguas chilenas. Estos incluyen, las siguientes
especies: Cribralaria labiodentata Moyano, 1983 y Cribrilaria paschalis Moyano, 1973
de la Isla de Pascua; Cribrilaria innominata (Couch, 1844) del Archipiélago de Juan
Fernández; Bellulopora bellula (Osburn, 1950) de Chile Central; Jolietina latimar-
ginata (Busk, 1884) y Parafigularia magellanica (Calvet, 1904) de los Archipiélagos
australes chilenos y las tres especies antárticas Cribrilinma projecta Waters, 1904,
Figularia spatulata (Calvet, 1909) y Membraniporella antarctica Kluge, 1914.

*This communication was read during the International Bryozoology Association Sixth International Con-
ference, University of Vienna, Austria, 1983.

**Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Casilla 2407, Concepción, Chile.

48 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Se propone el nuevo género Parafigularia para acomodar a Membraniporella
magellanica Calvet, 1904, por presentar módulos zoariales triloculares compuestos
por un autozooide, una avicularia y un quenozooide distal.

Se prueba que la pared frontal secundaria de Bellulopora bellula se com-
pone de costillas umbonuloides que se originan de cavidades dietelares distintas
de las que comunican zooides vecinos.

Para demostrar las diferentes estructuras zooidales se incluyen dibujos y
fotografías al microscopio electrónico de barrido.

INTRODUCTION

Among the different structures protecting the membranous fron-
tal wall of the Anascan Cheilostomata, the pericyst proves to be one of
the most productive structures from an evolutive point of view. It cha-
racterizes the families Arachnopusiidae, Hiantiporidae, Exechonellidae,
Cribrilinidae (Bassler, 1953, Harmer, 1957) and the many Cretacean
Cribrimorph families described by Lang (1921). In the first three families,
as in some genera like Trilaminopora (Moyano, 1970) the pericyst origi-
nates from irregular spines or processes coming inward from the extra-
terminal calcareous wall. “These extensions fuse and leave an irregular
set Of lacunae which vary from many (Arachnopusia, Exechonella) to one
(Trilaminopora). Apart from these families, pericyst-like structures form
in some genera or species in various families, viz. Callaporidae, Scrupo-
cellariidae, Bicellariellidae, where this protective shield results from
enlarged spines or plates (Harmelin, 1975; Larwood, 1969; Harmer, 1926).

The Recent Cribrilinidae and the Cretaceous related families
display a pericyst made up of hollow parallel radiating ribs which can
fuse by their ends or lateral margins thus being separated by slits or pore
rows. The families bearing this sort of pericyst constitute the Cribri-
morpha proper (Lang, 1916, 1921; Harmer, 1926; Osburn, 1950; Cuffey,
1973). Some Ascophora families seem to have derived from cribrimorph
ancestors such as Catenicellidae, in which it is possible to see several
lineages starting on genera with pericystal frontal secondary walls (Banta
€c Wass, 1979). On the other hand, the existence of cribrimorph ances-
tru lae in some exochellid genera like Romancheina — whose post-ances-
trular zooids have an umbonuloid frontal wall — would probably evidence
an origin from cribrimorph ancestors (Moyano, 1968).

Cretaceous Cribrimorpha have been principally studied by
Lang (1921) and Larwood (1962) who have produced large monographic
memoirs. The Tertiary and Recent ones appear in many faunal studies
from different parts of the world (MacGillivray, 1895; Jullien, 1886;
Harmer, 1926; Osburn, 1950; Brown, 1952). Among the more recent
papers, special mention deserves the one on the Mediterranean Cribrilaria
(Harmelin, 1970) and those devoted to the Cribrimorpha from the Feastern
Atlantic (Harmelin, 1978) and to the Western Africa forms. (Cook, 1967).

In the Southern Hemisphere there seems that no large mono-
graphic studies on the Cribrimorpha have been made; although many ge-
nera and species have been dealt with im works devoted to Recent and

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 40

Tertiary faunas from Australia, New Zealand and South America (Mac-
Gillivray, 1885; Waters, 1905; Calvet, 1904a, 1904b, 1909; Brown, 1952;
Powell, 1967).

The Cribrimorpha from South America and Antarctica are com-
paratively poorly known; six species have been recorded in the Brazilian
coast (Barbosa, 1964); four in the Galapagos islands (Osburn, 1950); one in
Juan Fernández islands and three along the Chilean coast (Moyano, 1983);
and only three south of the Antarctic Convergence (Rogick, 1965). Unlike
the Antarctic, the small and remote Easter island has three cribrimorphs
out of 18 known bryozoan species (Moyano, 1973. 1983).

The aim of the present contribution is to improve the scarce
konwledge on the small but peculiar cribrimorph fauna from Chile.
Thus, this work will deal with the zooidal structure, geographical dis-
tribution and systematic position of the species studied.

MATERIALS AND METHODS

a. The studied samples were collected as indicated hereinafter:

Easter Island (279%07'S; 109922'W), 1934, 76 m depth; collector:
Ottmar Wilhelm G. Species: Cribrilaria innominata and Cribralaria labio-
dentata; 1972, intertidal; collector: H. 1. Moyano. Species: Cribrilaria
paschalis.

Juan Fernández Archipelago: (33238'S; 78258"W), 1967, 3-5 m
depth; collector: G. Sanhueza B. Species: Cribrilaria innominata.

Central Chile (33206'S; 71949'W), 1964, 137 m depth; collector:
H. L Moyano * E. Alarcón. Species: Bellulopora bellula.

Magellanic Region: (Magellanic Archipelagos 5095; 5595), Cen-
tolla Expedition, 1961-1962. Bahía Inútil Magellan Strait ca. 30 m depth;
collector: V. A. Gallardo. Species: Jolietina latimarginata and Parafigu-
laria magellanica.

Antartic Region: Low island (689%25.5'S; 62209.5"W), 1969; 60
m depth; collector: J. Castillo. Species: Figularia spatulata; Robert island
(62923'S; 59937'W), 1965, 20 m depth; collector: H. 1. Moyano. Species:
F. spatulata; Doumer island (64%52'S; 63236"W), 1973, 67 m depth; co-
llector: M. A. Retamal. Species: Membramiporella antarctica. Ross Sea
Area, (75900'S; 169928"E) 1967, 124-329 m depth, and (76%02.15'S; 179*—-
57"W), 1972, 347-358 m depth. Species: Cribrilina projecta; one colony
from each of these areas was sent to the author by J. Winston from the
Smithsonian Sorting Center, Washington. In addition, a loan specimen
of C. projecta labeled “450” from the Discovery Collections was studied;
this specimen, sent from the British Museum (N. H.) by P. L. Cook has,
unfortunately, no collecting data.

b. For each species, a brief diagnosis and a table with measu-
rements are given. This table includes the following measurements in
mm based on twenty different zooids or zooidal structures.

50 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984,

Z.1. = zoecial length

Z.w. = zoecial width

Apl. = zoecial orifice length

Ap.w. = zoecial orifice width

Av.l. = avicularium length

Av.w. = avicularium width

O.l. = ovicell length

O.w. = ovicell width

Av.m.l. = avicularian mandibule length
Av.m.w. = avicularian mandibule width
F.r.n. = pericyst rib number.

Following each specific diagnosis, the measurements will appear
this way: z.1. = 0.756 0.923 0.805 0.907 showing minimum, maximum,
average value, and the standard deviation respectively.

c. Drawings were made with the aid of a camara lucida from
dry and/or wet material. Photographs were taken with an Auto Scan
ETEC Electromicroscope (SEM). Samples were metalized with a gold bath
of 300 Á thick. Photographic film is 21 Din. Samples for SEM photogra-
phies were previously boiled in a concentrated NaCIO solution.

d. Terminology applied to the hard parts follows Lang, 1921,
Osburn, 1950 and Banta 1970. "The interpretation of soft and hard parts
follows Banta and Wass, 1979.

ENE RS OIE ANTAS:

A. SYSTEMATICS

In this section all the species and the new genus will be sum:
marily described.

Ballulopora bellula (Osburn, 1950)
Figs. 1, 2, 18, 19, 20.

Colletosia bellula Osburn, 1950: 188; pl. 29, fig. 1.
BelluloPora bellula (Osburn), Lagaaij, 1963: 184; pl. 4, fig. 2. Moyano
€ Melgarejo, 1977: 172; figs. 9-11.

DIAGNOSIS:

Zoarium encrusting, unilaminar, pluriserial, white, glistening.
Zooids large, separated by deep furrows. Frontal secondary wall having
11-16 ribs excluding the apertural bar; these ribs being separated by many
disto-proximal elongated pores. Primary aperture a clithridiate orifice
closed by an operculum of the same form and size; secondary aperture
at the end of a horse-shoe-shaped distally elevated peristome. Two tiny

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 51

disto-lateral avicularia forming the distal part of the peristome, fre-
quently wanting or replaced by blunt processes. Hyperstomial ovicell
(calcified entoecium) being actually inmersed into a distal kenozooid
(this being the “ectoecium””) made up of 10-12 ribs exactly in the same
way as the frontal wall. With a large number of basal dietellae inter-
locking with the ones that originate the frontal ribs of both zooids and
kenozooidal ovicells.

Measurements in mm.

LN. =. 0:700 — 1000 — 0.855 — 0.106
Low. = 0.500 — MOTO (=D = y 0076
Ap.l. 35% 04163 ==. .0.188): =1:0.174 ¿<= 0.007
Ap.w. == OLSS = 0.175. =" JO0U5b E=S40009
O.l. = 0.300 —= 00.500, = "OA 0007
O.w. = USO —=.. 0.500 = . 0.408 ..—=. 0.039
1 ÍTiO = US 18 16 1.30
O.r.n. — LO 12 10.45 0.59
DISTRIBUTION

Gulf of California, 14-40 fms; Galapagos islands 50-60 fms;
Pleitocene of New Port Harbor Mesa, Southern California (Osburn,
1950: 189); Gulf of Mexico (Lagaaij 1963); Central Chile (Moyano £ Mel-
garejo (1977).

Cribralaria labiodentata Moyano, 1983.
Eres. dl 22,120.

Cribralaria labiodentata Moyano, 1983: 7, Fig. 5.

DIAGNOSIS:

Zoarium encrusting, unilaminar, white, glistening. Zooids large,
flat, separated by low furrows; frontal secondary wall having 11-18 ribs
including the apertural pair, separated by two rows of pores; apertural
rib pair stout, fused in the middle and serrated in their distal border
causing the proximal side of the aperture being dentate; one pair of
distal lateral oral sines fused medially forming the distal apertural border.
Avicularium interzoecial, asymmetrical, with an irregular quadrate cham-
ber and a long, asymmetrical curved and produced rostrum; avicularian
mandibule long pointed and asymmetrical. Ovicell endozoecial, hemis-
phaerical, shallow inmersed into the avicularian chamber. Interzooidal
communication pores numerous, round, simple and forming a line along
the lateral and distal walls.

52 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 47 - 72, 1984.

Measurements in mm.

Lil, O TOZO 1.000 0.759 0.099
LW. = 0.300 0.475 0.371 0.048
Ap.l. == 0.100 0.125 0.113 0.011
Ap.w. = 0.125 0.175 0.146 0.012
Av.l. => 0.150 0.250 0.186 0.023
Av.w. =D DS 0.200 0.156 0.027
Av.m.l. = "0250 0.450 0.351 0.045
Av.m.w. = 0.088 0.125 0.106 0.012
Firme == ST 18 13.05 1.761
DISTRIBUTION:

Known only from type locality, Easter Island. 70 m. depth, on
coral blades (Moyano, 1983).

Cribrilaria innominata (Couch, 1844)
isa.

Lepralia innominata Couch, 1844: 114; pl. 22, fig. 4.

Cribrilaria innominata (Couch), Harmelin, 1970: 84; figs. 1d,
esa pal a o O O pl ae eZ

DIAGNOSIS:

Zoarium encrusting, unilaminar, white. Zooids small, ventricose,
separated by deep furrows; frontal secondary wall having 12-17 ribs in
unfertile zoecia and 11-16 infertile ones; between every two rib bases,
there is a large marinal pore which is followed by four to five smaller
ones towards the center of the pericyst; apertural ribe pair bifurcated
leaving a triangular suboral pore. Zooidal aperture semicircular encir-
cled by five spines in unfertile zooids and only four in fertile ones. Avi-
cularium interzoecial, large, reaching one half or more of the zoecial
length, with a long and acute mandibule. Ovicell hyperstomial, globose,
imperforate. Communication pores in serially disposed dietellae arounl
the zoecial base.

Measurements in mm.

Z.1. unfertile zooid 02315 0.500 0.421 0.047

F.r.n. unfertile zooid
Fir.n. fertile zooid

12 17 14.2 1629
11 16 SEDO 1159

LW. di SS ==. 110:225 0.375 0277, 0.033
7.1. fertile zooid MMM S 0.475 0.394 0.041
LAT Y WT. 213 0.350 0.264 0.042
Ap.l. == 0050 0.063 0.053 0.004
Ap.w. = PA0.069 0.085 0.077 0.004
Av.l. =M004188 0.375 0.256 0.047
Av.w. =118 09125 0.250 0.184 0.057
A.m.v. E OO 0.250 0.186 0.045
Av.m.w. — 0031 0.088 0.057 0.016

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 37 - 46, 1984. 53

DISTRIBUTION:

Species considered to be cosmopolite (Harmelin, 1978). In Chi-
lean waters, it has been found in Easter island at 76 m depth and in Juan
Fernández Archipelago at 3-5 m depth.

Cribrilaria paschalis Moyano, 1973.
Pies: 10020520:

Cnibrilaria paschalis Moyano, 1973: 8; pl. L 5.

DIAGNOSTIS:

Zoarium encrusting, unilaminar, white. Zooids small, ovate con-
vex, separated by deep furrows; frontal wall composed of 11-17 ribs sepa-
rated by 2-3 intercostal round and large pores; suboral pore triangular,
lying vertically and therefere perpendicular to the apertural plane. Semi-
circular zoecial aperture encircled by seven spines in unfertile zooids and
having only four in fertile ones. Interzoecial avicularia small, variable
irregulary distributed, its mandibule triangular, long. Imperforated hy-
perstomial ovicell closed by the operculum. Communication pores in seria-
lly diseposed dietellae around the zoecial base.

Measurements in mm.

Z.1. unfertile zooid 0.275 OE 0.349 0.050

Low. Él al == UAT 0.250 Weracas) 0.029
Z..1. fertile zooid = O 00 0.575 0.297 0.032
L.w. d = OS 0.250 era li) 0.027
Ap.l. 00:08 0.075 0.054 0.011
Ap.w. 0050 0.075 0.067 0.007
INE = LOT 0.188 0.158 0.021
ÁV.W. — 02050 01:25 0.091 0.025
Av.m.l. == 100:050 0.1153 0.081 0.014
Av.m.w, =0,0:025 0.050 0.032 0.006
0.1. =. OUOY 0.138 0024 0.009
O.w. = WHLZB 0.150 0.132 0.011

F.r.n. unfertile zooid
Fr.n. fertile zooid

DISTRIBUTION:

Known only from type locality, Easter island, intertidal zone,
on algae (Moyano, 1973).

54 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Cribrilina projecta Waters, 1904.
Hies LL, 1234 13, 12/0289 .20b 02%

Cribrilina projecta Waters, 1904: 41; pl. IL, figs. 14a-d.

Cribrilina Projecta Waters, Thornely, 1924: 10.

DIAGNOSIS:

Zoarium encrusting, unilaminar white to translucent. Zooids large,
somewhat lageniform, not much longer than wide, separated by deep fu-
rrows Oobscured later by calcification; frontal wall a pericyst occupying
almost all the frontal visible surface; pericyst composed of 16-19 narrow
ribs in zooids near the ancestrula attaining from 22 to 30 in older zooids
far from the ancestrula; ribs separated by 6-7 round pores. Apertural
bar thick and stout apparently given vertical offshoots in older zooids;
Oral area produced into a peristome; secondary aperture transversely
oval, its margin irregularly dentate, teeth being the tip of the finer bran-
ches resulting from the repeated division of the oral spines. Peristome
principally formed by a par of disto-lateral strongly stout spines that
divide many times and encircling the oral area and fusing between resul-
ting branches. Primary aperture without special structures. Zooidal oper-
culum not much differentiated from the membranous frontal wall. Avicu-
laria small, triangular, acute, pointing proximally; they originate probably
from nearby dietellae in triangular spaces where three zooids meet. Ovicell
unknown. Communication pores in large dietellae around the lateral
walls.

Measurements in mm.

Z.1. = 0.900 13125 1.028 0.067
ZL.w. == 0570 0.875 0.720 0.080
Ap.l. == 0.150 0.200 0.171 0.014
Ap.w == 0.225 0.275 0.256 0.016
Av.l. MIN = OIMOLSS 0.225 0.200 0.013
Av.w. MN = O) 0:075 OS25 0.099 0.016
F.r.n. Near ancestrula IN= "HG 19 Iza 1.09
F.r.n. far from ancestrula (N=20)42:2 30 23.70 1.64
DISTRIBUTION:

Antarctic seas. 70923'S; 82947"W, 480 m. (Waters, 1904). Common-
wealth Bay, 110 fms. (Thornely, 1924). Ross Sea area: 75%00'S; 169%28”E,
324-329 m, 76%02,15'S; 1799%57"W, 347-358 m, after the samples sent to
the author from the Smithsonian Institution Sorting Center and collected
by the R/V Eltanin in 1967 and 1972 respectively.

Bol. Soc. Biol. Concepaión, Chile. Tomo 55, 1984. 55

Figularia spatulata (Calvet, 1909)
Figs. 10, 36, 37.

Cribrilina spatulata Calvet, 1909: 9; pl. 2, figs. 1-3.
Cribrilina spatulata Calvet, Thornely, 1924: 10.

Figularia spatulata (Calvet), Livingstone, 1928: 47; pl. 2, fig. 6, Vigeland,
1952008:

DIAGNOSIS:

Zoarium encrusting, unilaminar, pluriserial, white-yellowish.
Zooids large, elongated separated by low furrows; frontal wall a fairly
developed gymnocyst made up of 11-17 flattened ribs that fuse in the
middle and laterally being separated by long slits; gymnocyst well deve-
loped but variable in its proximal extension; apertural bar ribs wider
and stouter delimiting a central v-shaped small sinus in the proximal side
of the aperture. Zoecial aperture almost identical in fertile and unfertile
zooids, with two small latero-proximal denticles for the articulation of
the operculum; four cylindrical lateral oral spines in unfertile zooids and
two spathulated ones in fertile zooids. Avicularia unknown, apparentlye
wanting. Ovicell hyperstomial large, elongated round to mitriform, with
two teardrop-shaped uncalcified areas on ectoecium. “Two uniporous sep-
tulae on each lateral wall and another on the distal wall.

Measurements in mm.

Z.1. unfertile zooid 0.575 0.925 0.786 0.103
LW. A Y 0.300 0.425 0.354 0.035
Ap.l. ze da 0.125 0.175 0.158 0.013
Da Ñ 0.150 0.200 0.174 0.011
Z.1. fertile zooid 0.700 0.100 0.879 0.104
L.w. Y Al 0.250 0.375 0.335 0.034
Ap.l. Ñ fs 0.150 0.200 0.172 0.015
A Ñ 0.150 0.200 0.186 0.015
Ov.l. 0.300 0.425 0.368 0.026
Ov.w. 0.250 0.350 0.306 0.021
F.r.n. unfertile zooid 14 20 16.70 1.65

F.r.n. fertile zooid 14 24 18.25 3.05

DISTRIBUTION:

Antarctic endemic species. Kaiser Wilhelm Sector and Victoria and
Adeliae Lands (Thornely, 1924; Livingstone, 1928); Bellingshausen Sea
Sector (Calvet, 1909; Vigeland, 1952); Heard and MacDonald islands
(d'Hondt, 1979); South Shetlands (Moyano, 1979, 30-90 m depth).

56 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Jolietina latimarginata (Busk, 1884)
Figs 1733092,

Cribrilina latimarginata Busk, 1884: 131; pl. 22, figs. 10. Calvet, 1904b:
18; Waters, 1905: 236.

Jolietina latimarginata (Busk), Canu 8 Bassler, 1929: 244, 101 a, b. Moyano,
1974: 10.

DIAGNOSIS:

Zoarium encrusting, unilaminar, multiserial yellowish. Zooids
wide, nearly flat, initially separated by deep furrows that later disappear
becoming filled by calcareous outgrowings; pericyst made up of 9-14 ribs,
which are clearly defined where they originate but becoming confused
in the pericyst centre; pericystal orifices round to reniform, not clearly
disposed as intercostal rows. Vibracularia interzoecial following each
autozooid; its chamber round to ovate with an oval frontal aperture
having a distal stout condile for the articulation of the vibracularian seta.
Zoecial aperture semicircular, narrow, much wider than long; no oral
spines observed. Ovicell seemingly endozoecial (C. € B., 1929) not present
in the studied samples. With large dietellae in lateral walls.

Measurements in mm.

Z.1. 0.350 0.500 0.445 0.045
L.w. 0.225 0.375 0.281 0.051
Ap.l. 0.050 0.088 0.072 0.009
Ap.w. 0.125 0.150 0.148 0.006

OR25 0.250 0.180 0.036
0725 0.250 0.194 0.032
0.575 1.375 0.919 0.228
9 14 127.5 1.41

Vibracularium 1.
Vibracularium w.
Vibracularin seta l.
F.r.n.

III

DISTRIBUTION:

South Atlantic Ocean, 37917'S; 53%52"W, 600 fms. (Busk, 1884);
Cabo Blanco, Southern Argentinian coast (Calvet, 1904b); North to Falk-
land islands, 135 m (Waters, 1905); South Eastern Pacific Ocean, 50936'S;
75942"W, 70 m (Moyano, 1974).

Bo!. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 57

Membramiporella antarctica Kluge, 1914.
es O

Memobraniporella antarctica Kluge, 1914: 677; pl. 33, fig. 7.

DIAGNOSIS:

Zoarium encrusting, unilaminar, multiserial, white-pink. Zooids
sligthly convex, separated by moderate furrows; gymnocyst somewhat deve-
loped laterally and proximally; cryptocyst made up of 13-21 distally bifur-
cated ribs that fuse only among the central part of the pericyst; each rib
bifurcates leaving among branches an elongated hole; on injured zoecia,
a second row of ribs develops under the original one, so it is possible to
find zooids with a double roof of ribs over the frontal membrane. Zoecial
aperture bell-shaped encircled by four and two oral spines respectively
in unfertile and fertile zooids; these spines may bifurcate as the pericystal
ones. Ovicell hyperstomial, the ectoecium leaving a triangular space in
the fronto-anterior part of the ovicell exposing the entoecium. Avicularia
seemingly wanting. Communication pores two simple septulae on each
lateral wall and another in the distal wall.

Measurements in mm.

Z.1. imfertile zooid 0.625 MZ 0.804 -0.108
Low. y Ys 0.325 0.500 0.416 0.045
Z.1. fertile zooid 0.825 0.125 0.949 0.095
TSE ña 0.300 0.500 0.371 0.062
Ap.l. unfertile zooid 0.125 0.175 0.158 0.015
Ap.w. y Ñ 0.125 0.175 0.153 0.012
Ov.l. 0.350 0.500 0.424 0.038
Ov.w. % a 0.300. 0.450 0.361 0.037
F.r.n. 13 Za 16.35 1.82
DISTRIBUTION:

Antarctic endemic species. Kaiser Wilhelm Sector 350-385 m
(Kluge, 1914); Heard and MacDonald islands (d'Hondt, 1979); South She-
tlands, 50 m (Moyano, 1978).

Parafigularia gen. n.

DIAGNOSIS:

Cheilostomata having rhomboidal morpho-functional trilocular
modules composed of an autozooid plus a dependent distal avicularium
and a triangular distalmost kenozooid. Frontal wall made up of a large
egymnocyst and a reduced costate pericyst. Ovicell hyperstomial conneted
with avicularian chamber. Communication pores not including dietellae.

Type-species: Membraniporella magellanica Calvet. 1904.

58 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

Parafigularia magellanica (Calvet, 1904).
Figs. 7, 8, 38-44.

Membraniporella magellanica Calvet, 1904a: 53; Calvet, 1904b: 15; pl. 1,
figs. 4a—b.

Cribrilina patagonica Waters, 1905: 236; pl. 28, figs. 6-7.
Figularia patagonica (Waters), López-Gappa, 1977: 180; pl. 1, figs. 4, 5.

DIAGNOSIS:

Zoarium encrusting, unilaminar, pluriserial, light-brown to yello-
wish. Zooids strongly convex separated by deep furrows; frontal wall prin-
cipally composed of a gymnocyst and of a small pericyst made up of 4-7
short and wide tapering ribs. These ribs meet in the middle forming a
low suboral umbo, and separated each other by basal slits. Zoecial aper-
ture dimorphic longer in unfertile zooids and more wide in fertile ones,
bellshaped and, therefore, wider proximally. A small transverse elevated
avicularium with a triangular mandibule laterally directed, situated dis-
tally to each autozooid. Ovicell large being only an elevated convex roof
of the distal part of the fertile zooid; its ectoecium being, actually, part
of the external wall of the avicularium, and so the entoecium -—the
ovicell proper— is partially inmersed in or wrapped laterally and distally
by the avicularian chamber; with a median carena extending to the
avicularium; undeveloped avicularia appear as round holes on the distal
part of some ovicells. Communication pores as uniporous septulae that
may form clusters.

Measurements in mm.

LEN unfertile zooid 0.475 0.750 0.576 0.074
LW. e de 0.300. “0.375 0.340 0.018
Ap.l. Y e 0.125 0.175 0.150 0.012
Ap.w. 5 E 0.175 0.213 0.186 0.013
LT: fertile zooid 0.550 0.800 0.661 0.074
LW. y e 0.300 0.400 0.361 0.020
Ap.l. de de 0.150 0.175 0.167 0.009
Ap.w. q e 0.200 0.250 0.232 0.014
Av.l. 0.150 0.200 0.170 0.018
Av.w. 0.075 0.125 0.108 0.018
Ov.l. 0.225 0.300 0.271 0.023
Ov.w. 0.325 0.400 0.355 0.022
F.r.n. unfertile zooid 5 7 ETS 0.76
F.r.n. fertile zooid 4 6 5.10 0.54
DISTRIBUTION:

Magellanic endemic species. Smyth Channel, 8 fms. (Calvet,
1904b); Cape Horn area (Waters, 1905); Beagle Channel (López-Gappa,
1977); Magellanic Archipelagos (Moyano, 1983).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984, 59

B. GENERAL REMARKS AND DISCUSSION

I FRONTAL WALLS

The frontal secondary walls of Cribralaria labiodentata. Cribri-
laria innominata, C. paschalis, Cribrilina projecta, Figularia spatulata,
Jolietina latimarginata and Parafigularia magellanica are typically made
up of hollow costae or ribs issuing from the marginal gymnocyst and,
therefore, different from those of B. bellula in which they originate from
dietellae other than those connecting neighbouring zooids.

Pericystal costae of J. latimarginata are clearly set off only at
their base because they fuse in an irregular way in the center of the peri-
cyst (Figs. 16, 33, 34). Frontal spines of C. labiodentata unlike the former
species are clearly distinct although having lateral spines or denticules
that fuse, thus producing two rows of pores between each pair of ribs
(Fig. 3, 21, 22). Costae of C. projecta are numerous, narrow, tapering
slightly to the center of the pericyst where they fuse;there are 6-7 round
pores every two of these ribs. C. innominata and C. paschalis have the
same type of pericyst but the number of pores separating the ribs dimi-
nishes from C. projecta to C. paschalis and varies in quantities ranging
from 6-7, to 4-5, and to 2-4, respectively.

F. spatulata like many species in its genus, develops a gymnocyst
encircling the costate frontal shield. In this species, however, 1t varies
from 1/3 of the frontal length to almost nothing. (Figs. 9, 10, 36). The
pericyst is made up of relatively flat and not tapering ribs, very close
each other, touching and fusing two or three times along their sides
leaving slit-like pores. Parafigularia magellanica, on the other hand, looks
very different from the latter because of the small number of ribs, 4 to
7, which cover a very small area. These costae are small, short and teardrop-
shaped fusing by their tips and leaving tiny slits at their bases. No evidence
of pelma or pelmatidia occurs in this or in the former species (Figs. 7, 41).

The extensive pericyst of M. antarctica is composed of forked
ribs which leave intracostal openings resulting from the branching tips
and not homologous with pelma. A striking character seen in several
ovicelled and sterile zooids is the presence of a second set of costae under
the primary one (Fig. 15). These seem to appear as a response to injures
against the external shield. Perhaps this is an adaptive response to restore
the weak pericyst whose spines break off very easily.

The pericyst of B. bellula looks and forms in an odd way. A close
examination of its surface reaveals the presence of a glistening epitheca
over the external surface of the “costae”. Each of them is actually one radial
canal issuing from a dietella lying at the base of the lateral walls. Each
of these dietellae alternates with those interconnecting contiguous zooids
and seemingly communicate them with the perigastric coelomic cavity.
This canal surely represents a coelomic extesion whose base is calcified
as in an umbonuloid frontal wall (Banta € Wass, 1979), and, therefore,

60 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

each of these “costae” is in fact a radial umbonuloid process with an
epitheca and a subjacent hypostegal cavity, and separated from the next
by a row of slit-like pores. This interpretation of each costa and of the
whole pericyst seems to be confirmed when looking at the growing colo-
nial edge; there, the developing zooids exhibit a marginal gymnocystal
fold growing and bending inward over the frontal membranous wall
(Fig. 2), exactly in the same way as an umbonuloid frontal wall develops
(Harmer, 1957; Banta and Wass, 1979). The pores separating the just
appearing “costae” on this growing fold do not emerge at its edge proper
but towards its periphery. On the other hand, each of these “umbonuloid
costae” has a large epitheca covered pore in the same place and situation
as areolae in a Gymnocystidean Cheilostomata (Banta, 1973) but lyimg
very near the basal zooidal wall. This pore is actually the upper part of a
“costal dietella” and seems to be different from pelma (Lang, 1921) be-
cause of its situation and topographic relations.

IT. ORAL AREA

The oral frame in Cribrilinidae is limited proximally by either
a pair of unmodified or somewhat modified or highly transformed aper-
tural ribs (Lang's apertural bar 1921). In addition, a variable number
of oral vertical spines does or does not participate in building a peristome.

In P. magellanica, the apertural bar does not differ from the
other pericystal spines. Oral spines are wanting and the oral aperture is
proportionally wider in ovicelled zooids than in sterile ones. Nor the
apertural pair differs in F. spatulata from the others composing the frontal
shield; oral spines, however, are four cylindrical ones in unfertile zooids
and two spathulated on fertile ones. M. antarctica shows a similar condi-
tion as the former two species in not having a specialized apertural pair,
but it differs from the latter in possessing forked oral spines.

The solid but unmodified apertural pair in /. latimarginata ma-
kes up the straight proximal border of its very wide aperture. This is also
straight in both C. innominata and C. paschalis, but the apertural pair is
here bifurcated from its base leaving a triangular to round suboral pore
lying on the apertural plane in the first and perpendicular to it in the
second (See Harmelin, 1970). The apertural pair of C. labiodentata lacks
the bifurcation of the Cribrilariae, but instead it is wider, stouter and
not tapering distally unlike the rest of the pericystal costae; costal spinules
grow also on the proximal side of the aperture. In addition, the two
distolateral oral spines distally overarch the aperture and fuse leaving
and infero-marginal distal pore.

In both C. projecta and B. bellula oral area includes a peristome.
This, in B. bellula, encircles a clithridiate primary aperture closed by a
very well chitinized operculum of its form and dimension. “This peristome
results in two pairs of modified outgrowths (Fig. 18, 20); the most proxi-
mal is the apertural pair itself and the more distal one can be replaced by
two tiny columnar avicularia; these two spinous processes grow up distally
and laterally fuse each other forming the peristome which slopes from
the distal to the proximal side of the aperture. This situation is more

Bo!. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 61

interpretative than based on a sequencing of each step of the process.
A diffenret situation occurs in C. projecta where there are no oral avi-
cularia but, instead, ramifying processes originating from the apertural
bar and from a pair of latero-distal “spines” (Figs. 29, 32). These rami-
fying structures grow up and laterally fuse forming a produced peristome;
the primary aperture is not closed by an operculum although it commu-
nicates widely with the subpericystal cavity; the operculum proper is in
direct relation with the membranous frontal wall as in Arachnopusia or
in the gymnocystidean genera Romancheina, Cellarinella and Systenopora
(Moyano, 1968). In the zoarial growing edge it is possible to follow the
whole building sequence of the peristome in C. Projecta (Figs. 12, 28, 32).
Difference in operculum construction, hard in B. bellula and weak in
G. projecta is probably related to two different strategies to protect the
entrance to the subpericystal cavity (homologous to the “ascus” in a Gym-
nocystidean Cheilostomata like Umbonula) the secondary aperture of B.
bellula is relatively large and the peristome slightly produced, whereas in
C. projecta the oblong and disto—laterally compressed secondary aperture
crowns a fairly long peristome with dentate free border; thus, the strong
operculum in B. bellula protects a wide and open aperture, whereas in
the second the protection results from the elongation and narrowing of
the peristome with less specialization of the operculum.

TIL. OVIGELES

The ovicells of Cribrilaria innominata and of C. paschalis are of
the hyperstomial type and closed by the operculum. Those of Figularia
spatulata and Membraniporella antarctica are also hyperstomial but with
an exposed area of the entoecium. This area is central and triangular in
M. antarctica and a double bilaterally symmetrical drop-=shaped structure
in F. spatulata. “They seem to decrease with age and calcification. The
ovicell of J. latimarginata has been said to be endozoecial (Bassler, 1953)
but the paucity of the studied material does mot permit to solve this
situation. This is also true of C. projecta.

Unlike the species indicated above Cribrilaria labiodentata has
endozoecial, shallow ovicells inmersed in the distal avicularium that fo:
llows each zooid which do not bulge over the frontal wall of the avicula-
rian chamber making them overlooked by a casual observer.

Ovicells of Parafigularia magellanica and of Bellulopora bellula
are of the hyperstomial type in a general sense but very special in their
structure and spatial relations with neighbouring structures. In P. mage-
llanica the ovicell is made up of an entoecial calcified part issuing from
the distal and lateral borders of the fertile zooid and of an ectoecium
formed by the proximal extension of the avicularian chamber in which
the ovicell is partially inmersed. It does not possess the uncalcified lateral
symmetrical fenestrae of the typical figularian ovicells and it is in addition,
crowned by the avicularium thus forming an ovicell complex. In some
of these complexes the avicularium fails to develop appearing in its place
a circular hole. As both situtions can occur in the same zoarium and in
very close zoecia it seems to represented different steps in the avicularium

62 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

ontogeny. Avicularia as round holes were described by Calvet, 1904, Wa-
ters 1905 and recently by López-Gappa; the latter discuss them indicating
the relations between Membraniporella magellanica Calvet and Cribri-
lina Patagonica Waters.

In B. bellula the ovicell external wall (=ectoecium) has the same
structure as the frontal shield, that is it, is composed of the ““umbonuloid
costae” described above. This fact and the presence inside the ectoecium
of a calcified globular structure (=the entoecium) widely separated from
the ectoecium leads one to consider the ovicell as being a kenozooid. In
addition, between the interior wall of the ectoecium and the exterior
one Of the entoecium is a horizontal membrane that seems to be homo-
logous to the frontal zooidal membrane. On the other hand, in a deve-
loping ovicell of the colonial growing margin it is possible to see the
same pattern of alternating dietellae giving birth to the “umbonuloid”
costae. “This confirms the kenozooidal nature of the ovicell.

IV, HETEROZOOIDS

Seven out of nine species studied have avicularian or vibracula-
rian heterozooids. These are wanting in M. antarctica and F. spatulata.
C. innominata, C. paschalis and C. labiodentata produce interzoecial avi-
cularia. "They are irregularly placed here and there and not connected
with ovicells in both Cribrilaria. "Those of C. labiodentata are budded
distally by most of zooids and conceal ovicells in their quadrate chamber;
most of their length accounts for the asymmetrical dentate rostrum con-
taining a very large and acute mandibule. Cribrilaria projecta also has
interzoecial avicularia issuing from triangular spaces between autozooids
and near the peristome; they are small, triangular, columnar and proxi-
mally directed. The contention that avicularia are rare (Androsova, 1972:
336) is confirmed in the two colonies studied here, being present only
in the older one.

The tiny columnar oral avicularia of B. bellula are not always
present, being absent or spine-shaped in most of zooids of the studied
colonies. They seem to be more common and larger in the samples studied
by Osburn (1950) from the tropical American Pacific. The dependent
avicularium of P. magellanica follows each zooid surmounting distally
the aperture of unfertile ones or the ovicell in fertile ones. This avicu-
larium, laterally directed and with a triangular mandibule. develops from
an oval depression distal to the opesia and connected to the zoecial cavity
through unipore septulae. Distally to it there is a triangular coelomic
space which is also connected with the zoecial cavity through septulae.
This space, which follows every avicularium, is covered by membrane and
its significance is unknown. It was first observed by Calvet (1904b) who
named it “Hoelung” and compared it with a somewhat similar structure
in Membraniporella agassizi (Smitt). It can be considered as a terminal
kenozooid. This kenozzoid-like structure and the dependent associated
avicularium make P. magellanica altogether different from other species
in the genus Figularia, which typically have interzoecial avicularia with
spathulated mandibules.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 63

J. latimarginata stands apart from the other studied species and
from all the other recent Cribrilinidae in that it develops vibracularian
heterozooids and produces a fairly large amount of calcareous tissue
filling the wide interzoecial furrows. Each of the vibracularia following
an autozooid has a transversely oval to round chamber with an elongated
transversal aperture having an impair proximally directed condile for the
articulation of the seta. The long setae measure up to one mm or more and
are laterally directed. “The spaces around the vibracularian chamber and the
zoecial lateral walls are rapidly filled with calcareous deposits separating
zooids as the species name indicates. These calcareous outgrowths seem
to originate from the large dietellae of the lateral walls. In this character
this species corresponds to many cretaceous forms in which these calca-
reous reinforcements are common (Lang, 1921; Larwood, 1969).

V. SYSTEMATIC POSITION

The generic position of Cribrilaria innominata and C. paschalis
seems to be clear and sound (see Harmelin, 1970). Jolietina latimarginata
on account of its very specialized vibracularian heterozooids deserves the
separated generic position in which it has been placed. The same is valid
for Cribralaria labiodentata which clearly corresponds to the type=species
of its genus, C. curvirostris Silén; it stands out, however, by the double
row of pores between ribs. The presence of this species in Easter island
completes the western north and south Pacific distribution of the genus
Cribralaria from near Japan (Silén, 1942) to New Zealand and Australia
(Powell, 1967) to Easter island (Moyano, 1983). Figularia spatulata,
although lacking interzoecial avicularia belongs, no doubt, to Figularia be-
cause of the structure of its ovicell and pericyst. This is not the case with
the so-called Figularia magellanica (Calvet) (=Membraniporella mage-
llanica Calvet, = Cribrilina patagonica Waters) in which the pericyst
undergoes an extreme reduction as in some specimens of F. fissa (Harmer,
1926); in addition, interzoecial avicularia are altogether wanting and
the ovicell is partially inmersed in a distal dependent avicularium. All
these characters make Figularia magellanica not congeneric with Figu-
laria. It is neither possible to adscribe it to any other Recent genus nor
to any fossil one on account of the following characters: (a) strongly
reduced pericyst, (b) dependent distal avicularium, (c) hyperstomial ovi-
cell being wrapped by the aviculariam chamber and lacking the ecto-
cystal windows of Figularia proper, (d) uniporous basal septulae, and,
(e) each morpho-functional colonial module is made up of three elements:
autozooid, avicularium and distal kenozooid. Hence, the necesity of intro-
ducing the new genus Parafigularia gen. n., already described above.

M. antarctica has the typical characteres of MembraniPorella,
that is, ribs free in most of their length fusing slightly in the centre of
the pericyst and a hyperstomial ovicell. It lacks, however, the avicularia of
the genotype M. nitida (Johnston). The umbonuloid structure of the
frontal ribs in Bellulopora bellula justifies its inclusion in a different
generic entity as proposed by Lagaaij (1963) and perhaps it would deserve
a suprageneric status of its own. Lyrula hyppocrepis, as described and
depicted by Osburn (1950, pl. 27, figs. 7, 8), seems to have the same costa]

64 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

structure due to the presence of a large pore at the base of each rib, but
this species shows instead very large interzoecial avicularia unlike B.
bellula.

Cribrilina projecta from Antarctica seems to be not congeneric
with Cribrilina. lts tiny avicularium is budded between zooids not repla-
cing one of them in a series. Hasting (1964) suggested that it is also not
congeneric with Reginella. Its peristome and the way in which it forms
would indicate a separated generic status for this species, but the paucity
of the available material and the imperfect knowledge of many Recent
Cribrilinid genera do not permit us to formally propose it.

CONCLUSION

This study further shows that:

a. Chilean Cribrimorpha include the species: Bellulopora bellula (Osburn,
1950). Cribralaria labiodentata Moyano, 1983, Cribrilaria innominata (Couch, 1844),
Cribrilaria paschalis Moyano, 1973, Cribilina Projecta Waters, 1904, Figularia spatulata
(Calvet, 1909), Jolietina latimarginata (Busk, 1884), Membraniporella antarctica Kluge,
1914 and Parafigularia magellanica (Calvet, 1904).

b. B. bellula has umbonuloid costae issuing from dietellae and hence it is
structurally different from most of the Recent Cribrimorpha.

c. Ovicell ot B. bellula is inmersed in a kenozooid structurally similar to an
autozooid.

d. C. labiodentata from Easter island extends to the Eastern Pacific the
geographical distribution of Cribralaria.

e. €, projecta develops a peristome giving the zooids am urceolate aspect,
principally from two enlarged and multiramified oral spines. This character makes
this species different from all Recent Cribrimorpha.

f. The new genus Parafigularia is proposed to include Membraniporella
magellanica Calvet hitherto considered to be congeneric with Figularia.

g. P. magellanica colonies are made up of trilocular modules composed of
an autozooid, a dependent transversal avicularium and a distalmost kenozooid. These
characteres indicate that this species im not congeneric with Figularia.

Fig. 1.- Bellulopora bellula. Three ovicelled zooids; the one right showing the small en-
toecium; that at centre exhibits an early stage of the ovicell ontogeny, black are costal
dietellae and white dots intercommunication dietellae. Fig. 2.- B. bellula. Zooid at
the colonial growing edge; developing pericyst forms as an umbonuloid fold. Fig. 3.-
Cribralaria labiodentata. Two ovicelled zooids and interzoecial avicularia. Fig. 4.-
Cribrilaria innominata. Fertile and unfertile zooids and interzoecial avicularia. Fig. 5.-
C. paschalis. Infertile zooid and interzoecial avicularia. Fig. 6.- C. paschalis. Fertile
zooids. Fig. 7.- Parafigularia magellanica. Note dimorphic apertures and distal avicu-
larium. Fig. 8.- P. magellanica. "Two zooids at colonial growing edge. At left the tri-
lecular structure of each zoarial module. Fig. 9.- Figularia spatulata. Early astogeny.
Note tatiform ancestrula. Fig. 10.- F. spatulata. Old ovicelled zooids.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

66 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

Fig. 11.- Cribrilina projecta. One zooid having a broken penicystal centre and three
interzoecial avicularia. Fig. 12.- C. Projecta. Yound zooid at the growing edge showing
an early stage in peristome development. Fig. 13.- C. Projecta- Young zoarium having
what seems to be the ancestrula. Fig. 14.- Membraniporella antarctica. Young zoecium
having forked ribs. Fig. 15.- M. antarctica. Ovicelled zooids showing the triangular
ectoecial fenestra. Fig. 16.- Jolietina latimarginata. Frontal view of zooids and vibra-
cularia. Fig. 17.- J. latimarginata. Two young zooids at the colonial growing edge.

Fig. 18.- Bellulopora bellula. Oral area and ovicell. Fig. 19.- B. bellula. Frontal view
of a complete ovicelled zooid. Fig. 20.- B. bellula. Rear view of ovicell showing the same
structure as the frontal wall. Fig. 21.- Cribralaria labiodentata. Oral area and apertural
bar made up of two stouter ribs. Fig. 22.- C. labiodentata. Interzoecial asymmetrical avi-
cularium and unfertile zooid. Fig. 23.- C. labiodentata. Avicularium showing the serrate
rostrum and the lateral septulae. Fig. 24.- Cribrilaria innominata. Frontal view. Note
interzoecial avicularia suboral pore and number of apertural spine bases. Fig. 25.-
Cribrilaria paschalis. Frontal view of an unfertile zooid. See the seven spine bases
around aperture. Fig. 26.- C. Ppaschalis. Frontal view of an ovicelled specimen.
(Ms. 120 74 10) 80 alos lO 2230 Ela 20 US ts o la ADA Pe L0S)L

Fig. 27.- Cribrilina projecta. Frontal view of a yound zooid. Round pores on frontal
ribs (pelmatidia) are actually broken frontal spinules. Fig. 28.- C. Projecta. Oral area
in lateral view. See the apertural bar and the disto-lateral ramifying spines. Fig. 29.-
C. projecta. Rear and upper view of latero-distal ramifyinmg oral spines. Fig. 30.-
Membraniporella antarctica. Frontal view. Fig. 31.- M. antarctica. Oral area and aper-
tural bar. Note forked ribs. Fig. 32.- C. projecta. Lateral and upper view of the peris-
tome. Note that the disto-lateral spines embrace upright growing processes of the
apertural bar. Growing and fusion of these structures build up the peristome. Fig. 33.-
Jolietina latimarginata. Oral area and vibracularian chamber. Note the condile inside
the latter. Fig. 34.- J. latimarginata. Fronto-lateral view of a zoecium and the inter-
zoecial “spaces” becaming later calcified. Fig. 35.- M. antarctica. Ovicell showing
triangular ectoecial window.

(SS A SS AA EM ess ies Silos ios 0% O 00 lle; 243) e OS)

Fig. 36.- Figularia spatulata. Frontal view ovicelled zooids. Fig. 37.- F. spatulata. Ovicell
exhibiting ectoecial windows. Fig. 38.- Parafigularia magellanica. Frontal view of three
fertiles zooids. The ovicell at left has an undeveloped avicularium on its distal part.
Fig. 39.- P. magellanica. Distalmost kenozooid of an unfertile zooid. Fig. 40.- P. magella-
nica. Undeveloped avicularium crowning an ovicell and the distalmost kenozooid that
has been compressed by the developing ovicell. Fig. 41.- P. magellanica. Developing zooid
in frontal view showing the distalmost complex of avicularium plus kenozooid. Fig. 42.-
P. magellanica. Young zooids at the colonial growing edge. Fig. 43. P. mMage-
llanica. Lateral view of zoarial module showing autozooid, avicularium and kenozooid.
Note on lateral wall uniporous septulae. Fig. 44.- P. magellanica. Frontal view of a
more advanced stage than that on fig. 41. (Figs. 36 x 27; 37 x 72; 38 x 45; 39 x 111;
AMAS OA AS SL)"

70 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

ACKNOWLEDGEMENTS

The author thanks Miss Patricia L. Cook from the British Mu-
seum (N. H.) and Dr. Judith Winston from the Smithsonian Sorting
Center for sending samples of C. projecta; people appearing im Materials
and Methods for collecting most of samples; Mr. Raúl Alarcón and Mr.
Hugo Pacheco from the Laboratorio de Microscopía Electrónica, Uni-
versidad de Concepción, Chile for the SEM photographies, and Mr.
Miguel Alarcón for correcting the typescript.

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Soc. Bol. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, pp. 73-85, 1984. 13

ELECTRODIAGNOSTIC EVALUATION IN CHILDHOOD
NEUROMUSCULAR DISEASES*

Evaluación Electrodiagnóstica en Alteraciones Neuromusculares en el niño

BERYL NORRIS**, SILVIA PALACIOS** and HECTOR SUAREZ***

ABSTRACT

An investigation into several electrodiagnostic tests has been carried out in
children 5-13 years of age, presenting with various neuromuscular diseases, to assess
the validity of these procedures in the characterization of these disorders. A. slight
increase im excitability was found in children with upper motor neuron diseases.
Mvopathics had significant perturbations in strength-duration curves, accommodation
indexes and nerve stimulation studies. Changes im action potential characteristics
were more marked im progressive muscular dystrophy patients than in other myopa-
thics. These results are compatible with a neurogenic basis for muscle diseases. In
peripheral nerve injuries and neuropathies these changes were more highly significant
and reflect proportionately greater nerve and muscle damage.

RESUMEN

Se efectuaron estudios electrodiagnósticos en niños entre 5-13 años, quienes
presentaban diversas alteraciones neuromusculares, para evaluar su validez en la
caracterización de estas enfermedades. Se encontró un aumento leve de la excitabilidad
en niños con enfermedades de neurona motora superior, en contraste con pacientes
que presentaban lesiones de neurona inferior. Los pacientes miopáticos presentaban
alteraciones significativas en las curvas de imtensidad—duración, índice de acomodación
y estudios de estimulación nerviosa, resultados que son compatibles con daño neu-
rógeno. Las alteraciones en las características del potencial de acción fueron más
marcadas en los miños con distrofía muscular progresiva que en los demás miopáticos.
En pacientes con lesión traumática de mediano y en las neuropatías estas alteraciones
eran más altamente significativas y reflejaban daño neuromuscular proporcionalmente
mayor.

Keywords: Children. Neuromuscular diseases. Electrodiagnostic tests. Myopathies and
neuropathies. Motoneuron dysfunction.

*This work received financial support from egrants 2.09.36 and 2.09.57, Vice Chancellor for Scientific
Research, Concepción University, Chile.
**Department of Physiological Sciences, Concepción University, Chile.

***Department of Paediatrics, Guillermo Grant Benavente Hospital, Concepción University, Chile.

74 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

INTRODUCTION

Electrodiagnostic studies play a prominent role in the assessment
of the complex neuromuscular disorders of childhood (Dyck, 1968; Swai-
man and Wright, 1979). To evaluate their advantages im the confirmation
of clinical diagnosis and in the characterization of myopathies and neu-
ropathies, these tests were made on children presenting with different
pathological disorders of the lower motor neuron. Since no single crite-
rion is sufficient for accurate evaluation, a composite of electrophysio-
logical tests was found necessary; thus, the chronaxie, the strength-dura-
tion curve and the accommodation index in traumatic nerve injury helped
to determine the degree of innervation (Gilliatt, 1962), to differentiate
upper from lower motor neuron disease (Wynn Parry, 1971), and to dis-
tinguish “neurogenic”” from “myogenic” disease processes. In patients
with a peripheral neuropathy, all these studies yielded significant inmfor-
motion. In addition, these methods also revealed differences between
congenital myopathies which are often non-progressive, and progressive
muscular dystrophies (Swaiman and Wright, 1979).

METHODS

Patients. Forty-nine children (ages 5-13 years) with various pathological
states of muscle and nerve were examined. Six children presenting with
upper motor neuron lesions were also included in the study.

Controls. Twenty healthy children (4-13 years) with no history of neu-
romuscular disease served as control subjects. All children were supplied
by the Department of Paediatrics of the “Guillermo Grant Benavente”
Hospital in Concepción, Chile, from January 1977 to December 1980.

Electrophysiological techniques. The following investigations were per-
formed on the right or left flexor digitorum sublimis and tibialis anterior
muscles: strength-duration curves, chronaxie, accommodation index, and
motor nerve stimulation studies in the median and deep peroneal nerves.

Stimulation. Square wave pulses delivered through a pair of electrodes
were used to determine rheobase, chronaxie and strength-duration curves.
Exponentially rising currents with different RC constants were applied
to measure the accommodative reactions (Norris et al., 1981). The active
electrode was a N? 40048 Alvar staimless steel ball 1 cm in diameter,
covered by a lint pad soaked in 10% sodium chloride solution, positioned
on the skin over the motor point of the muscle and connected to the
negative pole of the stimulator. The reference electrode was a lead plate
(surface 35 cm?), coated with electrode jelly, and held in position on the
skin with a rubber band at a distance of 10 cm from the stimulation
electrode. The combined dc resistance when placed in contact with the
skin was 10-30 kilo ohm. The stimuli were obtained from a Grass Ss,
stimulator through a SIU5 isolation unit.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 75

Procedure. The strength-duration curves, chronaxie and motor nerve
conduction velocity were measured according to the methods described
by Cohen and Brumlik (1976) and Delisa and Mackenzie (1982). To de-
termine the accommodation index, the threshold stimulus for each of 5
RC constants was divided by the excitation threshold for a square wave
stimulus and the accommodation index (Al) was calculated according to
the equation: AI = 1/l,, where 1 = exponential and l, = square wave
current.

Motor nerve conduction velocity was measured in the median and
deep peroneal nerves by means of percutaneous stimulation. The stimulus
was a square wave pulse of 0.5-1 ms duration delivered through a N?
40048 Alvar electrode at a frequency of 1-3 Hz. The cathode was placed
on the skin over the nerve in the antecubital space and at the wrist for
the median, in the popliteal fossa and at the lateral malleolus for the
deep peroneal. A thin, flat lead plate ground was placed between the
stimulation and recording electrodes. “The evoked compound muscle
action potentials were picked up by a fixed pair of N? 41208 Alvar
electrodes placed over the abductor pollicis brevis for the median and
over the extensor digitorum brevis for the peroneal, led to a Grass 5P,
EMG preamplifier and displayed on a Tektronik 502A dual beam osci-
lloscope. The latency time was measured from the onset of the stimulus
artifact to the start of the action potential. Conduction velocity of the
most rapidly conducting fibres was determined by dividing the distance
beween the proximal and distal stimulation points by the difference in
latency of the action potential recorded on stimulation at these points.

T'hroughout the work values refer to the mean + SEM. Student's
t test was used for analysis of statistical data. P < 0.05 was considered
significantly different from control values.

RESULTS

The clinical conditions found in the 55 patients are listed in
Table 1. Upper motor neuron disorders included were cerebral vascular
accidents (hemiplegia) and cerebral palsy; myopathies included patients

TABLE ]I

Diagnosis, number of patients and time if evolution of disease.

DIAGNOSIS N9 of Time from onset of
patients disease (months)
Upper motor neuron lesions 6 2— 5
Myopathies 11 4-18
Progressive muscular dystrophy 6 4— 9
Median nerve injury 6 3— 7
Deep peroneal neuritis 6 6— 8

Polyrradiculo - neuritis 20 1- 4

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

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II] A19vL

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 79

diagnosed as benign hypotonia (Walton's disease) and congenital myotonia.
Dystrophies were Duchenne, limb-girdle and facio-scapulohumeral dys-
trophy. Median nerve injuries were due to supracondylar or slightly
higher fractures of the humerus. Deep peroneal neuritis was due to
diabetic neuropathy or was of unknown aetiology.

Strength-duration curves. The six patients with upper motor neuron
lesions showed a tendency to increased excitability in the muscles of
upper and lower extremities, although the displacement was not signi-
ficantly different from the values for normal children (Fig. 1A and 1B,
P < 0.8). In myopathic (including dystrophic) and median nerve injury
patients, partial denervation for the flexor digitorum sublimis (Fig. 14)
was evident for stimuli with pulse durations shorter than 1 ms; no res-
ponse could be obtained at pulse durations shorter than 0.05 ms. Both
myopathics and progressive muscular dystrophy patients also showed a
significant decrease in tibialis anterior excitability for pulses shorter
than 3 ms (Fig. 1B). In patients suffering from peroneal nerve neuritis
and polyrradiculoneuritis, the strength-duration curve profiles showed
partial and nearly complete denervation respectively. No response was
obtained for pulses shorter than .1 ms in children with peroneal neuritis,
and for pulses shorter than 1 ms in children suffering from polyrradiculo-
neuritis.

Rheobase and Chronaxte. Table 2 shows that the values for both parameters
were increased in all patients, except those presenting with upper motor
neuron lesions. The increase in rheobase values was not significant except
in median nerve injuries, where a higher threshold may be expected in
an early stage of recovery or im a compression syndrome. The rise in
chronaxie for myopathies, although not significant for the tibialis ante-
rior, was an unexpected finding, and was greater in dystrophic children.

Accommodation index curves. ln upper motor neuron lesions the upper
extremity muscles had normal accommodative reactions; the lower extre-
mlty muscles showed a slight increase in accommodation (Fig. 2A and 2B).
In the remaining groups the index was reduced. The decrease in acco-
mmodation for the tibialis anterior muscles in myopathic patients, inclu-
ding dystrophic children, was significant for RG constants greater than
40 ms. The reduction was highly significant in nerve injuries and peroneal
neuritis for RC constants greater than 20 ms, and accommodation was
practically abolished in polyrradiculoneuritis.

80 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

A

Oo——O NORMAL SUBJECTS

A——A UPPER MOTOR NEURON LESIONS

A——A MYOPATHIES (INCLUDING PROGRESSIVE MUSCLE DYSTROPHIES)
o—o MEDIAN NERVE INJURY T

e——e POLYRRADICULONE URITIS

1.60

INDEX

1.40

1.204

ACCOMMODATION

RC CONSTANTS (MS)

Fig. 2

Fig. 2.- Accommodation index curves in children with neuromuscular diseases. A) right
flexor digitorum sublimis and B) right tibialis anterior muscles. Values are means
+ SEM. Statistical differences from control values: P <<*0.01; **0.001; ***0.0001.
Figures in parentheses indicate mumber of patients examined. +No response ZE
++no response in 4 patients.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 81

B

o——o NORMAL SUBJECTS |
A——A UPPER MOTOR NEURON LESIONS |
A——A MYOPATHIES (INCLUDING PROGRESSIVE MUSCLE DYSTROPHIES)
o—o DEEP PERONEAL NEURITIS T

- e —e POLYRRADICULONEURITIS +3

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20 oia dao 80 100
RC CONSTANTS ( MS)

Fig. 2

Motor nerve stimulation studies. Motor nerve conduction velocity was
significantly reduced in polyrradiculoneuritis and median nerve injuries,
and slightly reduced in the deep peroneal nerves of progressive muscular
dystrophy patients (Table 3). More striking than the slowing im conduc
tion was a highly significant reduction in amplitude of the compound
muscle action potential of median and deep peroneal nerves, in all groups
presenting with lower motor neuron pathology. “The increase im distal
latency of the action potentials, although less marked, was also significant
as can be seen from the examination of Table 3.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 83

DISCUSSION

Although the abnormalities found in upper motor neuron lesions
are not significant, they have been included since these minor changes
reflect a slight increase in excitability as monitored by the strength-dura-
tion curve (Wynn Parry, 1971) and by the decrease in tibialis anterior
chronaxie. The increase in motor nerve conduction velocity might be due
to reduced internal or external resistance of lower motor neuron axons
as a consequence of after discharges, often found in spastic disorders. The
rise in accommodation index might be explained if after discharges re-
duce membrane potential; sodium inactivation will then increase and
accommodation will also tend to increase (Quevedo et al., 1978). These
changes contrast with those found in children with lower motor neuron
disorders.

Since myopathies have been considered diseases in which no dis-
turbance of lower motor neurons is present, the strength-duration curve
should be normal unless late stage fibrosis induces muscle degeneration.
The curves found in 17 myopathic patients, including dystrophies, thir-
teen of whom were in the fourth to ninth month of the disease, are sig-
nificantly abnormal for all muscles tested. Harris (cited by Wynn Parry,
1971) has described these curves in one patient with progressive dys-
trophy; we have seen no further reference to this finding, which Harris
explains as due to constriction of nerve fibres by fibrotic muscle. Our
patients were at an early stage of their disease and this explanation cannot,
therefore, be considered satisfactory. Lambert (1960) found evidence for
a neural basis of dystrophy; Fenichel (1975) concluded that the neuro-
muscular junction was a focal point in the consideration of the patho-
genesis Of Duchenne dystrophy; and McComas (1977) reported losses of
functioning units, probably present at birth, in this disorder. In central
core disease increased motor unit fibre density similar to the density
described in moderately severe axonal neuropathies has been found (Cruz
Martinez ¡catalogo

The decrease in accommodation, which was more marked than
the only just significant shift of the stength-duration curve in myopathic
tibialis muscles, shows that this test is a sensitive index of neuromuscular
damage in agreement with previous findings (Norris et al., 1979; Norris
et al., 1981; Concha, 1982).

Nerve stimulation studies have shown changes in the amplitude,
shape, distal latency of the compound muscle action potential, and of
motor nerve conduction velocity in several types of neuropathies (Kaeser,
1975) and in some myopathies (Cohen and Brumyik, 1976). The non-signi-
ficant decrease in conduction velocity in our patients might argue against
a neural basis for these diseases, or alternately, this technique may be
inadequate to assess motoneuron involvement in myopathic muscle except
in disease of long standing. The finding that conduction velocity is
slightly lower in dystrophic children than in other myopathic patients
seems to imply extensive neurogenic dysfunction in the former. The de-

84 Bol. 5oc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

crease in muscle action potential amplitude and increase in distal latency
is significant in both groups, particulary im dystrophic children. These
characteristics are therefore more important than the measurement of
conduction velocity, im the evaluation of neuron function in neuromus-
cular diseases. |

These findings, taken in conjunction, implicate a defect in motor
neuron—muscle fibre relationship im myopathies, and furnish additional
evidence for a neurogenic origin of disorders according to the hypothesis
proposed by Rowland (1974) and McComas et al. (1974).

The significantly altered strength-duration curves for the muscles
of median nerve injury patients, together with the prolonged chronaxie,
point to neurapraxia since the muscles responded to short duration pulses
(Brooks, 1976) and therefore a favourable prognosis might be expected.
However, the marked decrease in the slope of the accommodative index
in these patients revealed moderate nerve pathology and is in accordance
with the previously discussed sensitivity of this test. “The considerable
decrease In action potential amplitude, increase im distal latency, and
reduction in conduction velocity can be ascribed to the reduced diameters
of the regenerating nerve fibres.

The magnitude of nerve damage is reflected in the marked dis-
placement of the strength-duration curves and prolonged chronaxies for
peroneal neuritis, in contrast to the slight changes in recovering median
injuries. Conduction velocity was less affected in peroneal neuritis; 1t is
well known that pathogenetic agents induce a variety of histological alte-
rations according to the severity and length of action of the agent, and
these pathological states may be more accurately monitored by tests such
as the strength-duration curves and accommodation.

In this series of patients, the most crippling disease was poly-
rradiculoneuritis and the tests were imdicative of severe denervation; the
strength-duration curve profiles were those found in almost denervated
muscle fibres, chronaxies were greatly prolonged, and accommodation
was almost abolished. Axonal degeneration interferes with inactivation
of the sodium carrying mechanism (Hodgkin and Huxley, 1952) and
thus decreases accommodation (Saez, 1982; Concha, 1982). The extensive
damage revealed by nerve stimulation studies is probably due to both
demyelination and axonal degeneration (Raine, 1978; Kaeser, 1975).

These tests showed slight increases in neuromuscular excitability
in children presenting with upper motor neuron diseases and significant
perturbations of strength-duration curves, chronaxie, accommodation
indexes, and of nerve stimulation studies in non progressive myopathies.
The changes in action potential characteristics were more marked in pro-
eressive muscular dystrophy patients than in myopathics; in both groups,
these results support a neurogenic basis for muscle disease. Peripheral
nerve injuries and neuropathies revealed values consistently different
from myopathies, and the most pathological values were found in poly-
"rradiculoneuritis patients.

This work furnishes further evidence that disorders previously
considered due to structural or metabolic defects of muscle, show neuro-
-na] muscle fibre dysfunction.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 85

ACKNOWLEDGEMENTS

The authors owe thanks to Mr. Oscar Sepúlveda and to Mars.
María Cecilia Nova for technical assitance.

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Soc. Bol. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 87 - 92, 1984. 87

PROCTOECES CHILENSIS, NUEVA ESPECIE (TREMATODA,
STRIGEATOIDEA, FELLODISTOMIDAE), PARASITO EN
SICYASES SANGUINEUS MULLER £ TROSCHEL, 1843

(PISCES: TELEOSTEI)

Proctoeces chilensis m. sp. (Trematoda, Strigeatoidea, Fellodistomidae),
Parasite of Sicyases sanguineus Miller £ “Troschel, 1843) (Pisces, Teleostei).

MARCELO OLIVA MORENO*

RESUMEN
Se describe Proctoeces chilensis n. sp. (Yrematoda: Fellodistomidae) encontrado
en el intestino de Sicyases sanguineus Múller £ Troschel, 1843, en la zona de Antofagasta
(23042'Lat.S; 70024” Long.O.). El cuerpo del animal es ovoide, 2.1-8.26 mm de longitud;
huevos pequeños 39.2 x 23.7 micras. Ovario de forma variable, desde reniforme a ova-
lado. Este es el primer trematodo fellodistómido descrito para peces marinos chilenos.

ABSTRACT
Proctoeces chilensis n. sp. (Trematoda: Fellodistomidae), found in the intestine
of Sicyases sanguineus Múller £ Troschel, 1843 (“Pejesapo”, literally “Frog—fish”),
taken at Antofagasta, Chile (23042”Lat.S; 70024'Long.0.) is described. The body is
elongated 2.1-8.26 mm long; egg size small 39.2 x 23.7 microns. The ovarian shape
varies from kidney-shaped to oval. This is the first Fellodistomid described in marine
fishes from Chile.

Keywords: Platyhelminthes. Trematoda. Fish Parasites. South Eastern Pacific.

INTRODUCCION

Yamaguti (1971) indica qué especímenes adultos del género
Proctoeces, se han citado como parásitos en peces marinos, principalmente
Sparidae y Labridae; especies de este género se conocen también como
parásitos de moluscos gastrópodos y pelecípodos marinos. El primer informe

*Instituto de Investigaciones Oceanológicas. Universidad de Antofagasta. Casilla 1240. Antofagasta. Chile.

88 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

sobre moluscos como hospedadores de Proctoeces, corresponde a Fujita
(1925), quien describe Proctoeces ostreae sobre la base de metacercarias
recolectadas en Ostrea gigas en Japón; posteriormente se han agregado,
entre otros, los informes de Freeman £ Llewellyn (1958); Stunkard 8:
Uzmann (1959); Loos-Frank (1969). Para Chile, Bretos (1980) cita la
presencia de Proctoeces sp. en lapas del género Fissurella, en las costas
de Iquique.

El único trematodo digeneo conocido en peces marinos chilenos
(Oliva, 1983), corresponde a Hymenocotta manteri Overstreet, 1969. En el
presente trabajo se describe una especie de trematodo perteneciente al
género Proctoeces, encontrado en Sicyases sanguineus, el cual se considera
nueva especie y es denominado Proctoeces chilensis.

MATERIALES Y METODOS

53 parásitos fueron recolectados de 4 peces obtenidos por pesca-
dores de la zona de Antofagasta. Los especímenes fueron separados del
intestino del hospedador, lavados en solución salina 0.879%,, prensados y
fijados con A.F.A., posteriormente fueron teñidos con hematoxilina Dela-
field y/o bórax carmín, aclarados en creosota, lavados en xilol y montados
en bálsamo de Canadá. Los dibujos se realizaron con la ayuda de una
cámara clara. Las medidas se tomaron con un ocular micrométrico. Rangos
de medida se expresan en milímetros (mm), salvo se indique lo contrario;
entre paréntesis se expresa el promedio de medidas.

Las siguientes abreviaciones institucionales se usan:

MZUC = Museo Zoología, Universidad de Concepción.

IO = Instituto de Investigaciones Oceanológicas
Universidad de Antofagasta.

RESULTADOS

Proctoeces chilensis n. sp.

Lámina I. Figuras 1-3

Hospedador : Sicyases sanguineus M. € T.

Habitat : Intestino

Localidad : Antofagasta — Chile 23%42'"Lat.S; 70%24'Longo.

Holotipo : MZUC N? 6400.

Paratipos : MZUC N? 6401-6402 Dos ejemplares teñidos y montados
MZUC N? 6403-6412 Diez ejemplares fijados.

HO 40 ejemplares teñidos y montados.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 89

DESCRIPCION:

(Basada en 43 ejemplares teñidos y montados).

Cuerpo liso (Lám. l, fig. 1) ovoide, con ambos extremos redon-
deados, longitud total 5,158 (2,10- 8,26), ancho máximo a nivel de aceta-
bulum 2,496 (1,34-3,84). Ventosa oral subterminal, subcircular, diámetro
0,684 (0,38-0,90); acetabulum en el tercio medio del cuerpo, diámetro
acetabular 1,409 (0,71-1,89), relación ventosa oral: acetabulum = 1:2.

Prefaringe ausente, faringe muscular, globosa, más ancha que
larga 0,474 x 0,359 (0,25 x 0,20 — 0,63 x 0,44), se continúa en un corto
esófago 0,25 (0,05-0,63), la bifurcación cecal ocurre anterior al acetabulum
y los ciegos corren por los bordes del cuerpo hasta cerca del extremo pos-
terior.

Testículos ovalados, diagonales y en tándem, ubicados en la zona
anterior del tercio medio del parásito, ambos de similar tamaño: anterior
0,589 x 0.492; posterior 0,636 x 0,463; de cada uno de ellos nace un vaso
eferente, el cual corre hacia adelante, fusionándose cerca de la base del
saco del cirro y penetrando posteriormente en él, éste es de forma de mazo
y mide 1,297 (0,91-1,87), se ubica al lado izquierdo del acetabulum, ini-
ciándose en su nivel medio y llegando por debajo de la bifurcación cecal.
El tercio posterior del saco del cirro contiene la vesícula seminal, que
presenta dos porciones bien definidas; la primera, asociada a la base del
saco, tiene estructura maciza y forma triangular, originándose de ella una
porción retorcida y replegada sobre sí misma. El saco del cirro “ontiene
además una pars Prostatica tubular, así como también células prostáticas.

Ovario pretesticular, de forma variable, desde arriñonado a oval;
de 36 ejemplares, en 1 (2,8%) el ovario es reniforme, en 12 (33%) es
lanceolado y 33 (64,2%) lo tienen ovalado (Lám. l, fig. 2). Glándulas
vitelógenas foliculares, distribuidas en dos campos laterales en la zona
ovario-testicular; del borde inferior del ovario se origina un oviducto
que recibe los conductos vitelarios, formando un ootipo, el que se encuentra
rodeado de las glándulas de Mehlis (Lám. l, fig. 3). El útero es largo,
tubular y replegado sobre sí mismo, originando numerosas asas, las cuales
corren inicialmente en dirección descendente, ocupando prácticamente
todo el cuerpo, desde el nivel ovárico hasta el extremo posterior; el útero
asciende bordeando el saco del cirro por el lado izquierdo de éste, el me-
tratermo se abre en la base del atrio genital, el que se ubica ventralmente
en la zona media del cuerpo, bajo la bifurcación cecal.

Vesícula excretora en forma de “Y”, la bifurcación ocurre a la
altura de los testículos, cada rama corre por los bordes del cuerpo hasta
la bifurcación cecal, sin fusionarse.

Huevos pequeños y numerosos de 39,2x23,7 micrómetros (n=218).
Coloración: el animal vivo es blanquecino en la zona anterior. Posterior
al acetabulum se hace amarillento, debido a la presencia del útero grávido.

DISCUSION

Wardle (1980), apoyándose en los trabajos de Freeman £ Llewe-
llyn (1958); Stunkard £ Uzmann (1959); Freeman (1962); Dollfus (1964)
y Lang £ Dennis (1976), indica que la identidad específica en el género
Proctoeces se ve dificultada por la gran variabilidad en los caracteres taxo-

90 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

AS

Lámina 1. Proctoeces chilensis mueva especie. Fig. 1. Holotipo: Anatomía interna.
Fig. 2.- Formas ováricas; 2a = Reniforme; 2b = Ovalada; 2c = Lanceolada; Fig. 3.-
Reproductor femenino.

Clave: dv. = Ductos vitelarios; gm. = Glándulas de Mehlis; gv. = Glándulas viteló-
genas; od. = Oviducto; ot. = Ootipo; ov. = Ovario; pp. = Pars—prostática; sc. =
Saco del cirro; te. = testículos; ut. = Utero; vs. = Vesícula seminal.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 91

nómicos usualmente empleados. Esta variabilidad se ve confirmada por
las formas observadas en el ovario de Proctoeces chilensis.

Yamaguti (1971) reconoce nueve especies en este género:P. macu-
latus (Loos, 1901) Odhner, 1911; P. buccini Loos-Frank 1969;P. hawaiien-
sis Yamaguti, 1970; P. insolitus (Nicoll, 1915) Dollfus, 1952; P. magnorus
Manter, 1940; P. major Yamaguti, 1934; P. ostreae Fujita, 1925; P. proge-
neticus Dollfus, 1964 y P. scrobiculariae Loos—Frank, 1969. A estas hay que
agregar a P. neomagnorus Siddiqi « Cable, 1960, omitida por Yamaguti
(op. cit.) y P. ichiharai descrito por Shimura 8 Egusa (1979). Yamaguti
(Op. cit.), considera a P. lintoni Siddqi € Cable, 1960 sinónimo de P. sub-
tenuis, (especie que a su vez es considerada sinónimo de P. maculatus);
sin embargo, P. lintoni presenta una característica única entre las especies
de este género, cual es presentar la porción distal de la vesícula seminal
en forma de saco, característica que puede validar la especie. De modo
que el género comprende actualmente 12 especies, de estas, P. chilensis se
asemeja a aquellas especies consideradas de gran tamaño: mayores de 4 mm
(Shimura € Egusa, 1979), las cuales son P. major; P. maculatus y P. ichi-
harai; las dos últimas presentan huevos de tamaño mayor, 55 x 26 y 71.7
x 28.3 micras, respectivamente, en contraposición a P. chilensis que tiene
huevos más pequeños, 39.2x 23.7 micras; además P. ichiharai presenta
vitelógenas digitiformes, en cambio la nueva especie las presenta foliculares.

El tamaño de los huevos es similar tanto en P. major; P. neomag-
norus; P. scrobiculariae; P. magnorus; P. buccini y P. imsolitus, como en
la ahora descrita. De estas, P. insolitus presenta una vesícula seminal ex-
terna, lo que la diferencia de todas las especies del género, incluida P.
chilensis. De las restantes especies que presentan huevos de pequeño ta-
maño, la ahora descrita se diferencia claramente por su vesícula seminal
bipartita, esta particularidad se observa sólo en P. lintoni; este verme es
de pequeño tamaño (menos de 2 mm) y presenta huevos de 54-57 x 15-18
micras, características que la separan inmediatamente de Proctoeces chi-
lensis.

AGRADECIMIENTOS

El autor desea expresar sus agradecimientos al Doctor Juan Car-
vajal G., Pontificia Universidad Católica de Chile, por la revisión crítica
del manuscrito. Al Señor César Sandivari V., por la confección de las
ilustraciones. Este trabajo fue financiado por el Grant DICYT 10-06,
Universidad de Antofagasta.

BIBLIOGRAFIA

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tomidae) in mussels and fishes from Galveston Bay, Texas. Bull. Mar. Sci. 30: 737-743.

Yamaguti, S. 1971. Synopsis of digenetic trematods of vertebrates. Keygaku Publishing
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Soc. Bol. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, pp- 93-117, 1984. 93

ANATOMIA DESCRIPTIVA DE LA DENTADURA DE PUDU PUDU
MOLINA (ARCTIODACTYLA-CERVIDAE)

Descriptive anatomy of the dental system of Pudu pudu
Molina (Arctiodactyla—Cervidae)

CARMEN E. TRAUB*

RESUMEN
Se estudia la dentadura de 9 cráneos del “ciervo enano” Pudu pudu Molina.
Se describen en detalle las piezas dentarias permanentes y temporales, incluidos cortes
y radiografías. Se agregan observaciones sobre desgaste y secuencia de la reposición
de los dientes.

ABSTRACT
Dental system of ten skulls of the “Dwarf Deer” Pudu pudu Molina are studied.
Permanent and temporal teeth including cross sections and radiography are described
in detail. Observations concerning wear and dental reposition are added.

Keywords: Arctiodactyla. Cervidae. Pudu pudu. Anatomy. Dental system.

INTRODUCCION

La morfología dentaria es un elemento indicador de filogenia,
sistemática y hábitos alimentarios de un individuo por la íntima relación
que existe entre forma y función. Presenta, además, la ventaja de poder
realizar estudios de poblaciones basados en restos craneanos, € incluso
sólo si se dispusiera de piezas dentarias, sería posible establecer el número
y estructura etaria de la población.

Un estudio detallado de la micromorfología y el estudio por rayos
X conduce a un conocimiento de la mecánica funcional del individuo y
del plan de reposición de la dentadura.

*Departamento de Odontología Restauradora. Facultad de Odontología, investigadora invitada al Depto.
de Zoología, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de Concepción, Chile.

Dirección de la autora: Casilla 1134, Concepción, Chile.

94 . Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

La familia de los cérvidos constituye la única de los pecorinos o
rumiantes propiamente dichos que existe en la América del Sur. La den-
tadura de ellos tiene las características evolutivas generales de la de los
ungulados rumiantes de dedos pares: los incisivos superiores han desapa-
recido y en la mayoría de los que presentan cuernos, también lo han hecho
los caninos superiores; los caninos inferiores han adoptado la forma de
incisivos por lo que se considera como si hubiera 8 incisivos inferiores
en lugar de 6; los premolares no se han molarizado completamente y los
molares han adquirido forma cuadrangular con cúspide de forma cres-
céntica.

Este tipo de dentadura no es tan evolucionada y eficiente como
la de los ungulados de dedos impares y ello es probable que haya deter-
minado el hábito de rumiar, ya que cuando pacen tragan rápidamente
gran cantidad de alimentos que no alcanza a estar totalmente preparado
para la digestión y por lo tanto debe ser regurgitado. Los molares de los
ciervos y otros ramoneadores que llevan astas que mudan anualmente,
tienen corona baja, a diferencia de los mamíferos con cuernos verdaderos
y que pacen, que han desarrollado dientes de corona alta (hipsodontos).

El pudú es uno de los ciervos más pequeños del mundo y vive
casi exclusivamente en Chile. Habita entre espesos matorrales o en bosques
naturales. Mide más o menos 42 cm. de alto y su peso no alcanza a los 10 kg.
Los machos están provistos de cuernos simples sin ramas. Se le puede en-
contrar desde la provincia de Bío-Bío hasta el Sur de la provincia de
Aysén, en la Cordillera de la Costa y en la Cordillera de Los Andes, hasta
1.700 m. de altura. También se le encuentra en las islas Mocha, Chiloé y
otras. Es posible que poblaciones aisladas existan en la Cordillera Andina
desde la provincia de Curicó al Sur. El alimento preferido del pudú parece
estar constituido por el “chilco” (Fuchsia magellanica Lam.), así como de
otros arbustos y hierbas pequeñas.

En este primer trabajo realizado sobre un cérvido chileno se
establece las características morfológicas de la dentadura del pudú, intro-
duciéndolo en la sistemática como un elemento que permitiría establecer
comparaciones con otros cérvidos autóctonos.

MATERIALES Y METODOS

Se examinó 9 cráneos de pudú que se encuentran formando parte
de la colección del Depto. de Zoología de la Facultad de Ciencias Bioló-
gicas y de Recursos Naturales de la Universidad de Concepción. La iden-
tificación de este material se señala en el anexo A.

1.- Las piezas dentarias y las relaciones oclusales fueron observadas a ojo
desnudo y con lupa y su descripción se hizo utilizando la siguiente
nomenclatura, convencional en textos de anatomía dentaria humana
(Pagano, J. L., 1965):

Mesial: lo que se ubica hacia la línea media facial.

Distal: lo que se aleja de la línea media facial.

Bucal: superficies en relación con labios o mejillas.

Lingual: superficies en relación con el interior de la cavidad bucal.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 95

Oclusal: superficies en relación con la arcada opuesta.
Cúspides: eminencias marcadas en altura.

Surcos: depresiones lineales y marcadas.

Procesos: eminencias en longitud o crestas.

2.- Se examinó 12 piezas dentarias permanentes, pertenecientes al arco
superior e inferior, las cuales fueron desgastadas en distintos sentidos
utilizando instrumentos de carburundum montados en el torno dental.

3.- Se obtuvo radiografías periapicales del sector correspondiente a los
dientes posteriores de cinco arcadas, y al sector anterior de cuatro,
usando la técnica convencional (Gómez Mattaldi, R., 1979), las cuales
fueron observadas en un negatoscopio.

MATERIAL EXAMINADO

MATERIAL EXAMINADO

9 cráneos, MZUC N?9 5346, ex. Col. W. y S. Mann N? 4139, año
1938, Prep. Verg. D.; MZUC N?* 5385, Ex. Col. W. y S. Mann, VIII 1940
(sin localidad ni colector); MZUC N* 4235, Alquinta leg., Lota 8-VI71;
MZUC N? 4236, Concepción, Barrio Universitario, Colector Echegoyen,
IV-71; MZUC N2 4237, Ricardi leg. Río Lia, Sta. Juana, 7-V-71; MZUC
N? 4240, Concepción, Barrio Universitario, col. Echegoyen, 24-VI-71;
MZUC N? 4213, Chile, Angol; MZUC N?* 6211, Concepción, Barrio Uni-
versitario (sin fecha ni colector), det. T. Cekalovic; MZUC N? 6212, Con-
cepción ,Barrio Universitario, IV-72 (sin colector), det. T. Cekalovic.

Fste material está depositado en el Museo de Zoología de la Uni-
versidad de Concepción (MZUC), Concepción, Chile.

AGRADECIMIENTOS

La autora agradece al Dr. Jorge N. Artigas, Director del Depar-
tamento de Zoología de la Universidad de Concepción por su gentil invi-
tación a efectuar este trabajo en su Departamento, su permanente apoyo
y dirección en la confección del manuscrito. Al Prof. Hugo I. Moyano
por su colaboración en la revisión crítica del manuscrito. Al Sr. Ricardo
Troncoso Traub por la confección de las figuras, al Dr. Alberto Rivera
de la Facultad de Odontología por la toma de las radiografías, y al Sr.
Tomás Cekalovic por su apoyo en la recopilación bibliográfica.

RESULTADOS

ANATOMIA DENTARIA

La disposición de las piezas dentarias en individuos adultos de
Pudu pudu Molina, tanto en machos como en hembras, corresponde a
la siguiente fórmula dentaria:

96 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 55, 1984.

MAP RCA ISACAP EM
IS OAMI AS

= 32
OESTE O

IncisSivVOs:

Los ocho incisivos (1), ubicados en la parte anterior de la man-
díbula, están dispuestos ligeramente en forma de abanico y decrecen en
tamaño a medida que se alejan de la línea media (Fig. 1). I, e I, tienen
la corona en forma de bisel, los restantes tienden a ser cónicos debido a
una gran disminución del ancho mesio distal de la corona. Se encuentran
implantados en forma tal que sus bordes cortantes vistos desde arriba
forman casi un semi—círculo. El eje de implantación es inclinado hacia
adelante, inclinación que va aumentando progresivamente desde l, a I,, de
modo que en Í, es de más o menos 20? respecto a la vertical para llegar
a ser en I, cercano a la horizontal (más o menos 759) (Fig. 2).

Fig. 1.- Vista frontal de los incisivos permanentes; Fig. 2.- Vista lateral de los incisivos
permanentes. I, = incisivos centrales; L,, 1,, Il, = incisivos laterales.

I..- La cara bucal de este diente es ligeramente convexa de abajo arriba

y en sentido medio distal. Tiene forma irregularmente triangular
siendo el borde mesial convexo y el borde distal cóncavo (Fig. 3). La cara
lingual es cóncava y está limitada hacia mesial y distal por procesos mar-
ginales de esmalte. Presenta una cresta central que la recorre de arriba
abajo ensanchándose paulatinamente hasta unirse a los procesos margl
nales al llegar cerca del cuello. Determina así dos concavidades: una mesial
y una distal. Debido a que esta cresta es incurvada hacia distal, la foseta
mesial es mucho más amplia que la distal (Fig. 3b).

I,.- La corona es más estrecha e incurvada en sentido lateral que lo que

es la 1, por lo que el borde masticatorio se reduce mucho. La cara
bucal es lisa y convexa en ambos sentidos (de arriba abajo y de mesial a
distal). El borde mesial es más convexo y el distal más cóncavo que en L
(Fig. 4a). El borde masticatorio al intersectarse con el borde mesial lo
hace formando un ángulo redondeado, mientras que al hacerlo con el
borde distal el ángulo es más agudo (Fig. 3a). La cara lingual presenta

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Pomo 55, 1984. 97

los procesos marginales y la cresta central, esta última no disminuye pro-
porcionalmente a la reducción que presenta el ancho de la corona, por lo
que ocupa la mayor parte de la superficie de esta cara y determina que
las concavidades mesial y distal estén muy disminuidas y que el borde
masticatorio termine casi en punta (Fig. 4b).

l; e L,.- Estos dientes se parecen mucho a l., siendo la corona aún más
estrecha por lo que el borde cortante se transforma en una punta
y las superficies cóncavas de la cara lingual se reducen casi a surcos (Fig.

5a—b).

Fig. 3.- I,: a) cara bucal; b) cara lingual; Fig. 4.- 1,: a) cara bucal; b) cara lingual;
Fig. 5.- I, e I,: a) cara bucal; b) cara lingual.

Premolares y molares inferiores

Las piezas dentarias posteriores inferiores (Fig. 6) son tres pre-
molares y tres molares a cada lado. Se implantan en las ramas de la man-
díbula formando dos hileras que divergen hacia atrás. Vistos desde arriba

Fig. 6.- Premolares (A) y molares(B)

inferiores. Vista desde arriba.

098 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

las superficies linguales de ellos forman una línea casi recta, mientras que
las superficies bucales describen una suave linea convexa hacia bucal debido
al paulatino ensanchamiento en este sentido que presentan las coronas a
partir del ler. premolar hasta la parte anterior del 2% molar, para luego
enangostar lentamente hacia atrás. El espacio entre las dos hileras es mucho
menor que el que separa a los molares superiores.

El ancho buco-lingual de las coronas de los premolares y molares
inferiores es mucho menor que el de su correspondiente superior y son
todos alargados en sentido mesio—distal.

El eje de inserción de los premolares es prácticamente vertical,
mientras que el de los molares es inclinado hacia adelante, inclinación
que aumenta desde el ler. al 3er. molar (Fig. 7).

Fig. 7.- Vista radiográfica del sector posterior del maxilar inferior.

ler. Premolar inferior
La corona es muy estrecha en sentido buco lingual y las caras

bucal y lingual son muy convergentes hacia la superficie masticatoria, lo
que determina que ella se transtorme en un borde, por otra parte, son
ligeramente divergentes hacia distal por lo que dicho borde es más ancho
en distal que en mesial. La cara bucal (Fig. Sa) tiene forma pentagonal y
presenta el borde masticatorio dividido en dos vertientes: una mesial y una
distal, bastante inclinadas y que al juntarse forman un vértice mas o menos
agudo; la vertiente distal es más larga e inclinada que la mesial. La cara
lingual también es pentagonal y fuertemente inclinada hacia bucal. Está
limitada por procesos marginales y presenta dos procesos verticales que
la recorren determinando la formación de tres concavidades: una mesial,
una media y una distal, siendo la primera mucho más amplia que las
otras dos (Fig. 8b). La cámara pulpar es bastante amplia en sentido mesio
distal y posee 3 cuernos pulpares: uno central muy alto, y uno mesial y
uno distal bajos. En el piso de la cámara pulpar se encuentra la entrada
de los conductos radiculares. Presenta dos raíces: una mesial y una distal,
cilíndricas y prácticamente paralelas entre sí (Fig. 8c).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 99

C

Fig. 8.- Primer premolar inferior: a) cara bucal, b) cara lingual, c) corte mesio distal
mostrando anatomía interna. D) distal, M) mesial.

22 Premolar inferior

La corona es de tamaño ligeramente mayor que la del prime
premolar, y si bien es francamente comprimida en sentido buco lingual,
las caras bucal y lingual no son tan convergentes como en el primero, por
lo que se logra apreciar una superficie masticatoria en vez de un borde;
esta estrecha superficie es más o menos lisa e inclinada hacia bucal, forma
una sola cúspide en el centro desde donde se inclina hacia mesial y mucho
más fuertemente hacia distal, siendo ambas vertientes de más o menos
igual largo.

La cara bucal tiene una forma semejante al primero, pero es más
alargada en sentido mesio distal y presenta procesos marginales (Fig. 9a)
Se puede apreciar en ella una cresta vertical de esmalte que la divide en
dos porciones: una mesial casi plana y extensa y una distal pequeña. Esta
cresta se une a los procesos marginales determinando dos surcos: uno
mesial apenas perceptible y uno distal más pronunciado.

Fig. 9.- Segundo premolar inferior: a) cara bucal, b) cara lingual.

La cara limgual está limitada por fuertes procesos marginales y
presenta dos concavidades: una mesial más grande y una distal más pequeña
separadas por un proceso central. Los procesos marginales son muy desa-
rrollados al llegar a oclusal, por lo que el borde oclusal de esta cara pre-
senta tres eminencias o cúspides que corresponden dos a los procesos mar-
ginales y una al proceso central (Fig. 9b).

100 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

La anatomía interna (cámara pulpar y conductos radiculares) es
prácticamente igual al primer premolar. Presenta también, dos raíces (me
sial y distal) cilíndricas y casi paralelas entre sí.

3er. Premolar inferior

La corona es de mayor tamaño que la de los dos anteriores y pre-
senta cuatro cúspides: 2 bucales y 2 linguales, siendo de mayor altura las
linguales. Es comprimida en sentido buco lingual y la cúspide más pequeña
y baja es la disto bucal.

La cara oclusal (Fig. 10a) presenta un estrechamiento que insinúa
una división en dos porciones: una mesial y una distal, siendo de mayor
tamaño la primera. La porción mesial está formada por la unión de las
cúspides mesio bucal y mesio lingual y presenta en la parte más mesial ur.
surco entre ambas cúspides. Desde el vértice de cada cúspide bajan dos
vertientes: una hacia mesial y otra hacia distal. La porción distal está
formada por la unión de la cúspide disto lingual con la pequeña cúspide
disto bucal. La cúspide disto lingual presenta una hendidura que va desde
la parte más disto lingual de ella hasta el centro de la porción distal; es
más alta que la cúspide disto bucal, por lo que el plano oclusal de esta
porción es ligeramente inclinado hacia bucal.

Fig. 10.- Tercer premolar inferior: a) cara oclusal, b) cara bucal, c) cara lingual, d)
corte mesio distal.

La cara bucal (Fig. 10b) es pentagonal, más ancha en sentido
mesio distal que en el primero y segundo premolar. Tiene las mismas
características que las del segundo, pero la cresta vertical que la divide
es más notoria y determina la presencia de un surco distal profundo y una
porción mesial de mayor tamaño.

La cara lingual (Fig. 10c) está dividida por un surco vertical en
dos porciones convexas de las cuales la mesial es de mayor tamaño. El
borde oclusal presenta las eminencias de las dos cúspides, siendo más alta
la mesial.

La cámara pulpar presenta cuatro cuernos pulpares dirigidos uno
a mesial, uno medio, uno disto bucal y uno disto lingual y en el fondo de

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 101

la cámara se encuentra la entrada de los conductos radiculares que son
uno en cada raíz (Fig. 10d). Las raíces son ligeramente divergentes entre sí.
La raíz mesial es cónica y la distal un poco aplanada en sentido mesio distal.

ler. Molar inferior

Presenta su corona dividida en dos partes iguales (mesial y distal)
lo que produce la impresión que estuviera formado por la unión de dos
dientes más pequeños.

La cara oclusal (Fig. 1la) es de forma romboidal y presenta cua-
tro cúspides: dos bucales y dos linguales. Las cúspides linguales son más
altas y agudas que las bucales y éstas son más voluminosas en sentido buco
lingual. La forma de desgaste que experimenta con el uso la superficie
oclusal determina una mayor diferencia de altura entre las cúspides bucales
y linguales y la formación en el centro de cada cúspide lingual de un surco
que la divide en dos cúspides pequeñas (Fig. 12a). Cuando el desgaste es
ya muy severo, como ocurre en el animal viejo, esta formación desaparece
y la superficie oclusal prácticamente no presenta detalles (Fig. 11b).

Fig. 11.- Cara oclusal del primer molar inferior: a) en el individuo adulto (vista desde
arriba), b) en un individuo viejo (vista desde bucal).

Las dos cúspides mesiales (bucal y lingual), al igual que las dos
distales (bucal y lingual), se encuentran separadas entre sí por un surco
divisorio de concavidad lingual ubicado en la unión de los 2/3 bucales
con el 1/3 lingual (Fig. 1la), este surco es profundo en los dientes recién
erupcionados, poco notorio en los animales adultos para llegar a desapa-
recer en el animal viejo, debido al desgaste que experimenta la cara oclusal
(Fig. 11b).

Las cúspides bucales (mesial y distal) se encuentran separadas
entre sí debido a la presencia de un profundo surco que va desde la cara
bucal del molar hasta el surco oclusal (Fig. 11a); también las cúspides lin-
guales están separadas entre sí por un surco que viene de la cara lingual.
Las cúspides linguales presentan más marcadas las vertientes mesial y distal
y el vértice se encuentra ubicado más mesialmente que las de su homóloga
bucal; se presentan como sobrepuestas, dado a que ambas son inclinadas
de atrás adelante y de adentro afuera, por lo que el borde distal de la cús-
pide mesio lingual sobrepasa hacia lingual al borde mesial de la cúspide
disto lingual.

La cara bucal (Fig. 12a) presenta un profundo surco vertical que
la divide en dos lóbulos iguales francamente convexos hacia bucal. En el
borde oclusal se observan las eminencias de las cúspides respectivas.

102 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

Fig. 12.- Primer molar inferior: a) cara bucal, b) cara lingual, c) corte mesio distal,
d) corte vestíbulo lingual.

La cara lingual (Fig. 12b) está dividida en dos partes iguales,
casi planas, por la presencia de un surco vertical; debido a la dirección
oblicua de cada una de las partes, la distal aparece como encajada por
detrás de la mesial. La porción mesial presenta tres procesos de esmalte:
dos marginales y uno central, siendo el más prominente el marginal distal,
que sobresale francamente hacia lingual por delante del surco vertical
divisori0. La porción distal presenta un proceso central que baja de la
cúspide respectiva y uno marginal distal, no presentando proceso marginal
mesial. El borde oclusal tiene forma de doble V invertida debido a las
agudas prominencias de los vértices de las cúspides linguales. “Tiene dos
raices (Fig. 12c): mesial y distal, aplanadas en sentido mesio distal y diver-
gentes entre sí.

La pulpa dentaria se encuentra dividida en dos partes (mesial y
distal) que corresponde a cada una de las partes que conforman el diente
(Fig. 12c) y terminan hacia oclusal en dos cuernos pulpares dirigidos hacia
la cúspide bucal y lingual respectiva (Fig. 12d); a nivel de cuello presentan
un ensanchamiento en sentido mesio distal y luego se adelgazan nueva-
mente al penetrar en el conducto radicular correspondiente (Fig. 12c).
En las raíces la pulpa es como una cinta, ancha en sentido buco lingual
y muy estrecha en sentido mesio distal.

22 Molar inferior

Muy parecido al primero, se diferencia sólo en que su tamaño
es un poco mayor, y los procesos de esmalte de la cara lingual son más
marcados, además, las raíces no son tan divergentes.

3er. Molar inferior

Es mucho más largo en sentido mesio distal que los dos anteriores
y parece como si estuviera formado por la unión de tres dientes pequeños
de los cuales el distal sería casi rudimentario.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 103

La cara bucal (Fig. 13a) está dividida en tres lóbulos convexos:
mesial, medio y distal, de los cuales este último es el más pequeño.

La cara oclusal (Fig. 13b) presenta seis cúspides: tres bucales y
tres linguales: el ancho buco lingual decrece fuertemente hacia distal de-
bido a un desplazamiento hacia lingual de la cúspide disto bucal que hace
que casi desaparezca.

La cara lingual (Fig. 13c) es aplanada y presenta dos surcos ver-
ticales que bajan desde la cara oclusal y la dividen en tres porciones: me-
sial, media y distal. Las dos primeras son muy parecidas a las de los molares
primero y segundo; la porción distal es mucho más pequeña y no presenta
procesos de esmalte.

La pulpa dentaria se encuentra dividida en tres partes que corres-
ponden a cada una de las partes que conforman el diente. Sin embargo,
existe una comunicación de la cámara pulpar de la porción mesial con la
porción media (Fig. 13d). Los cuernos pulpares son muy largos y marcados
en las porciones mesial y media y van dirigidas hacia las cúspides bucal y
lingual respectivas. En la porción distal la pulpa es un conducto fino tanto
en la raíz como en la corona y termina hacia oclusal en un solo cuerno
pulpar.

Fig. 13.- Tercer molar inferior: a) cara bucal, b) cara oclusal, cara lingual, d) corte
mesio distal del tercer molar inferior.

104 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile Tomo 55, 1984.

Este molar presenta dos raices, pero tres conductos radiculares
debido a que la raíz disto bucal está formada por la fusión de la raíz que
corresponde a la parte media con la que corresponde a la parte distal, pero
conserva separados los conductos radiculares.

Premolares y molares superiores

Se encuentran implantados en los alveolos del maxilar en número
de seis a cada lado (3 premolares y 3 molares). Las coronas están en tan
íntimo contacto entre ellas que pareciera que la cara distal de una pieza
estuviera encajada en la cara mesial de la siguiente y forman una fila con-
tinua que es algo curva, con la convexidad dirigida hacia la mejilla (Fig.
14).

En una vista desde oclusal todas ellas, excepto la del primer pre-
molar, dan la sensación de estar giradas hacia fuera y adelante, ya que el
centro de las cúspides linguales está más hacia mesial que el de las bucales.
Las piezas superiores son mucho más anchas en sentido bucolingual que
las inferiores.

y
ES

Fig. 14.- Premolares y molares supe-
riores. Esquema de una vista desde
oclusal.

Vistos desde la cara bucal (Fig. 15), el plano oclusal determina
una línea de concavidad superior. El eje de inserción de los tres premo-

lares es casi vertical, mientras que el de los molares se inclina hacia atrás
(Fig. 16).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 105

Fig. 15.- Esquema de una vista lateral de los premolares y molares superiores. PM=
premolares; M= molares.

Fig. 16.- Vista radiográfica del maxilar superior.

Los premolares presentan dos cúspides y los molares cuatro, siendo
las bucales mucho más altas que las linguales y están separadas por surcos
de concavidad bucal.

Las caras linguales se continúan imperceptiblemente con las
caras proximales, mientras que las bucales están limitadas por fuertes
procesos marginales.

ler. Premolar superior

La corona es más larga en sentido mesio distal que vestíbulo
lingual. La superficie oclusal (Fig. 17) es rectangular, un poco más angosta
en mesial que en distal. Está limitada por procesos marginales y presenta
dos cúspides: una bucal y una lingual con forma de media luna, siendo
más alta y aguda la bucal.

106 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

Fig. 17.- Primer premolar superior: a) cara oclusal, b) cara bucal, c) cara lingual, d)
corte mesio distal.

La cara bucal (Fig. 17b) es rectangular, cóncava hacia bucal e
inclinada de atrás adelante. Presenta dos procesos marginales marcados
y un proceso vertical que la divide en dos concavidades: una mesial más
pequeña y una distal de mayor extensión. El borde oclusal tiene dos
vertientes: una mesial y una distal, siendo la mesial más corta e inclinada.

La cara lingual (Fig. 17c) es rectangular, convexa hacia lingual
y en la unión de los 2/3 distales con el tercio mesial presenta un surco
vertical de poca profundidad.

Presenta tres raíces: dos bucales y una lingual (Fig. 17d) de las
cuales la más pequeña es la mesio distal, mientras que las otras don son

cónicas. Todas las raíces son divergentes entre sí.
La cámara pulpar es muy baja, el techo de la cámara está muy

cercano al piso de ella (Fig. 17d), pero presenta cuernos pulpares muy lar-
gos y anchos (uno bucal y uno lingual) que se dirigen hacia las cúspides
respectivas.

22 Premolar superior

La superficie oclusal (Fig. 18a) es prácticamente cuadrada. Pre-
senta dos cúspides con las características generales descritas. Desde el centro
de cada cúspide bajan procesos centrales que se juntan a nivel oclusal.
Se encuentra limitada por procesos marginales y el surco central que separa

Fig. 18.- Segundo premolar superior: a) cara oclusal, b) cara bucal, c) cara lingual, d)
corte vestíbulo lingual.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 107

las cúspides es de concavidad bucal. El borde bucal es irregular debido
a las prominencias determinadas por los procesos de esmalte que presenta
la cara bucal, mientras que el borde lingual es irregularmente convexo
hacia lingual.

La cara bucal (Fig. 18b) es casi cuadrada, inclinada de adelante
hacia. atrás. presenta los mismos tres procesos que el primer premolar,
de los cuales el más marcado es el marginal mesial. El borde oclusal pre-
senta dos vertientes: una mesial más corta e inclinada y una distal más
larga y de menor inclinación.

La cara lingual (Fig. 18c) es lisa, francamente convexa hacia lin-
gual y de menor altura que la cara bucal. El borde oclusal es casi recto
debido a que apenas se insinúa el vértice de la cúspide lingual.

Las características de las raices y pulpa (Fig. 18d) son muy pare-
cidas al primer premolar, diferenciándose sólo en que la raíz lingual es
aplanada en sentido buco lingual.

3er. Premolar superior

Es prácticamente idéntico al anterior tanto en la anatomía ex-
terna como en la interna (Fig. 19a, b).

A

au.

A

A
Y 4
-%
osa
ON

O

Fig. 19.- Tercer premolar superior: a) corte mesio distal visto desde bucal, b) corte
mesio distal visto desde lingual.

ler. Molar superior

La corona es cuboidea, más ancha en sentido buco lingual que
mesio distal.

La cara oclusal (Fig. 20a) es ligeramente romboidal. Presenta
cuatro cúspides de tamaño más o menos igual. Las dos cúspides mesiales
(bucal y lingual) se encuentran separadas de las distales por un surco que
parte de la cara lingual y otro que viene de la cara bucal haciendo apa-
recer la cara oclusal como formada por la unión de dos dientes de dos
cúspides. El surco oclusal que marca la separación de las cúspides bucales
de las linguales tiene forma de doble V. El borde lingual tiene la misma

108 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

forma que el surco oclusal, mientras que el borde bucal es muy irregular
debido a las prominencias determinadas por los procesos de la cara bucal.
El borde mesial es más largo en sentido buco lingual que el borde distal.
En los dientes adultos el desgaste que han experimentado hace aparecer,
en el centro de cada una de las cúspides bucales, un surco que las recorre
en sentido ántero posterior dividiéndolas en dos cúspides más pequeñas,
las cúspides linguales se presentan muy bajas y aplanadas, transformadas
prácticamente en mesetas en las que la porción central es ligeramente
cóncava.

En un diente joven (Fig. 20b) las cúspides bucales son muy agudas
e inclinadas hacia el surco central oclusal y presentan un fuerte proceso
central que las hace más anchas en sentido buco lingual en la parte media
que hacia mesial y distal. Las cúspides linguales son más bajas pero el
vértice siempre es agudo, tienen bastante inclinación hacia el surco oclusal
y su forma es de media luna.

E b

Fig. 20.- Cara oclusal del primer molar superior: a) en un individuo adulto (visto
desde abajo): b) en un individuo joven (vista de lingual).

La cara bucal (Fig. 2la) es rectangular, inclinada de adelante
atrás y está dividida en dos partes (una mesial y una distal) por un surco
vertical. La porción mesial presenta dos procesos de esmalte: uno marginal
mesial y un proceso central. La porción distal es fuertemente inclinada
hacia atrás, cóncava hacia bucal y está limitada por dos procesos de esmalte
uno que sobresale hacia bucal inmediatamente por detrás del surco ver-
tical y otro en el margen distal. El borde oclusal está determinado por
las agudas cúspides bucales.

3mm
a al

Fig. 21.- Primer molar superior: a) cara bucal, b) cara lingual.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 109

La cara lingual (Fig. 21b) se encuentra dividida en dos lóbulos
convexos (uno mesial y otro distal) por un profundo surco que la recorre
en sentido vertical en la parte media y que llega casi hasta el surco oclusal.
El borde oclusal presenta las eminencias de las cúspides linguales. Los
bordes mesial y distal se continúan imperceptiblemente con las caras me-
sial y distal.

Presenta tres raíces (Fig. 22a): dos bucales y una lingual. Esta
última es muy aplanada en sentido buco lingual y presenta una estran-
gulación vertical central que tiende a dividirla en dos.

Fig. 22.- Primer molar supenior: a) raíces vistas desde lingual, b) corte vestíbulo lingual
visto desde el lado mesial.

La cámara pulpar es tan baja que en la parte central el techo
se junta con el piso y separa a la pulpa en dos porciones: una lingual y
una bucal (Fig. 22b), cada una de estas porciones termina hacia oclusal
en dos cuernos pulpares: uno mesial y uno distal. Los conductos radicu-
lares bucales son más estrechos en sentido mesio distal que buco lingual.
El conducto lingual es acintado: muy ancho en sentido mesio distal y es-
trecho en sentido buco lingual, la pulpa en él se divide al llegar al ápice
de la raíz y desemboca en dos orificios separados (uno mesial y uno distal).

2 DEN Molar superior

Son bastante parecidos al ler. molar, pudiendo diferenciarse a
simple vista sólo porque la porción distal de la corona es de un ancho
buco lingual menor que la porción distal. Esta diferencia de tamaño entre
ambas porciones es más notoria aun en el 3er. molar (Fig. 23a, b).

Fig. 23.- a) cara oclusal del segundo molar superior, b) cara oclusal del tercer molar
superior.

110 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Las características de las raíces y de los conductos radiculares son
similares al ler. molar. La cámara pulpar, tanto en el 22 molar como en
el 3er. molar, si bien es baja no alcanza a separar a la pulpa en dos por-
ciones; presenta cuatro cuernos pulpares muy largos dirigidos a cada una
de las cúspides.

Fif. 24.- a) corte transversal a nivel del fondo de la cámara pulpar del segundo molar
superior, b) corte mesio distal del tercer molar superior visto desde bucal, c) corte
mesio distal del tercer molar superior visto desde lingual.

DENTADURA TEMPORAL

Fórmula dentaria: M
3
3

Incisivos

Presentan las mismas características generales que los incisivos
permanentes, pero son de menor tamaño, y están dispuestos en forma de
abanico, además, la fuerte incurvación hacia distal que presentan las coronas
hace que una vista frontal de ellos tome un aspecto muy particular (Fig. 25).

Fig. 25.- Vista frontal de los incisivos

3 m m temporales.

SS

Molares

Las coronas de ellos son más pequeñas que los de los molares
definitivos y las raices son muy divergentes entre sí para dar cabida a los
folículos dentarios de las piezas definitivas.

Bol. Soc. Biol. ( mcepción, Chile. Tomo 55, 1984. 111

Los molares temporales superiores tienen una longitud mesio distal
mayor que la buco lingual, lo que provee el espacio para los premolares
permanentes, y en la arcada inferior este espacio lo da la configuración
anatómica especial que tiene el tercer molar temporal.

ler. Molar temporal superior

La corona es alargada en sentido mesio distal, y tiene dos cús-
pides. La cara oclusal (Fig. 26a) rectangular, muy inclinada hacia lingual,
es bastante reducida. Presenta un surco mesio distal de ligera concavidad
bucal, que lo separa en dos porciones: la bucal que presenta en la parte
central el agudo vértice de la cúspide bucal, y la lingual que es aplanada,
casi cóncava.

3mm

a

Fig. 26.- Primer molar temporal superior: a) cara oclusal, b) cara bucal, c) cara lingual.

La cara bucal es de forma rectangular, recta en sentido mesio
distal, presenta tres fuertes procesos de esmalte: mesial, medio y distal
(Fig. 26b).

La cara lingual (Fig. 26c) es muy baja, ligeramente convexa hacia
lingual y bastante lisa.

22 Molar temporal superior

La corona también es alargada en sentido mesio distal y comienza
a insinuar la sensación de estar formada por la unión de dos dientes pe-
queños, especialmente cuando no presenta mucho desgaste oclusal.

Fig. 27.- Segundo molar temporal superior: a) cara oclusal, b) cara bucal, c) cara lingual.

112 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile Tomo 55, 1984.

La cara oclusal (Fig. 27a) presenta cuatro cúspides que van desa-
pareciendo por desgaste a medida que aumenta la edad del individuo.
Las cúspides mesiales están separadas de las distales por un surco que
viene de la cara bucal y otro que viene de la cara lingual. El surco oclusal
que separa las cúspides bucales de las linguales tiene forma de doble V.

La cara bucal (Fig. 27b) se encuentra dividida en dos porciones
por un surco vertical. La porción mesial es recta en sentido mesio distal
y presenta dos procesos de esmalte: umo marginal mesial y uno central
entre los cuales queda una pequeña superficie cóncava hacia bucal; entre
el proceso central y el surco vertical queda una superficie de mayor exten-
sión que la anterior y más aplanada. La porción distal es inclinada hacia
lingual en sentido ántero—posterior y presenta dos procesos que la limitan
entre los cuales queda una superficie ligeramente cóncava hacia bucal; el
proceso que la limita hacia mesial es marcado y sobresale hacia bucal
inmediatamente por detrás del surco vertical mientras que el proceso
marginal distal es poco notorio.

La cara lingual (Fig. 27c) es más reducida que la bucal debido a
la convergencia hacia lingual de las caras proximales del diente; en ella
se puede apreciar un surco que la divide en dos lóbulos de convexidad
lingual.

3er. Molar temporal superior

Es prácticamente igual al primer molar permanente y sólo se
diferencia porque el tamaño es menor.

ler, y 22 Molar temporal inferior

Muy parecidos al primero y segundo premolar permanente, son
sí de menor tamaño.

3er. Molar temPoral inferior

La corona es sumamente alargada en sentido mesio distal y está
dividida en tres partes como si estuviera formada por la unión de tres
dientes pequeños de los cuales el de menor tamaño es el mesial. Tiene,
por lo tanto, seis cúspides. Cada parte (mesial, media y distal) tiene las
mismas características descritas para cada parte constitutiva del primer
molar permanente.

La cara bucal (Fig. 28a) está dividida en tres lóbulos convexos,
por la presencia de dos surcos verticales, es inclinada de atrás adelante
lo que determina que la superficie oclusal sea más ancha en sentido buco
lingual en la porción distal que en la porción mesial.

La cara lingual (Fig. 28b) es recta y presenta dos surcos verticales
que la dividen en tres partes que decrecen en altura desde distal a mesial.

El gran tamaño mesio distal de este diente permite dar el espacio
suficiente para que tengan cabida los premolares definitivos. Presenta tres
raices (Fig. 28c): mesial, media y distal. La raíz media es más corta y va
desapareciendo a medida que aumenta el volumen del folículo del pre-
molar definitivo (Fig. 30c).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 113

Fig. 28.- Tercer molar temporal inferior: a) cara bucal, b) cara lingual, c) vista radio-
gráfica antes de comenzar la calcificación del folícuic del diente permanente (A).

Relación de contacto entre dientes superiores e inferiores

Al estar en oclusión el primer premolar superior rebalsa ligera-
mente hacia bucal al primero y segundo de los premolares inferiores. Desde
aquí hacia atrás los dientes superiores van sobrepasando más hacia bucal
a los inferiores, en tal forma que a la altura de los molares las cúspides
bucales de los molares inferiores encajan en el surco oclusal de los supe-
riores y contactan con la superficie oclusal de las cúspides linguales de los
superiores. Las cúspides linguales de los molares inferiores rebalsan lige-
ramente hacia lingual a las de los superiores. En sentido ántero posterior
la oclusión se realiza de la siguiente forma (Fig. 29):

El primer premolar superior ocluye contactando la vertiente
mesial de la cúspide bucal con la porción distal del primer premolar infe-
rior, quedando la porción mesial de éste sin ocluir; y la vertiente distal
de la cúspide bucal contacta con la porción mesial del segundo premolar
inferior.

Fig. 29.- Esquema de las relaciones de oclusión de los dientes superiores con los inferiores.

En el segundo premolar superior la vertiente mesial de la cúspide
bucal no articula debido a que este diente presenta (al igual que todos
los superiores restantes) la versión hacia mesio bucal; es entonces la ver-
tiente mesial de la cúspide lingual la que articula con la porción distal
del segundo premolar inferior. La porción distal ocluye con la porción
mesial de la cúspide bucal del tercer premolar inferior.

114 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

En el tercer premolar superior la vertiente mesial de la cúspide
bucal no ocluye, por igual razón que en el anterior y es la porción mesial
de la cúspide lingual quien contacta con la porción distal del tercer pre-
molar inferior. La porción distal de la cúspide lingual ocluye con la ver-
tiente mesial de la cúspide mesio bucal del primer molar inferior.

En el primer molar superior las cúspides bucales no articulan y
la cúspide mesio lingual encaja entre las dos cúspides del primer molar
inferior y la disto lingual lo hace entre la cúspide disto bucal del primer
molar inferior y la cúspide mesio bucal del segundo molar inferior.

En el segundo molar superior la cúspide mesio lingual encaja
entre las dos cúspides bucales del segundo molar inferior y la disto lingual
lo hace entre la cúspide disto bucal del segundo molar inferior y la cúspide
mesio bucal del tercero.

En el tercer molar superior la cúspide mesio lingual encaja entre
las cúspides mesial y media del tercer molar inferior y la disto lingual lo
hace entre la media bucal y la pequeña cúspide distal del mismo.

En los movimientos de lateralidad se produce un perfecto engra-
naje entre las cúspides y surcos de las piezas superiores e inferiores.

La forma del desgaste que se aprecia en los individuos de más
edad hace presumir que el mayor esfuerzo se realiza en la zona compren-
dida entre la parte distal del segundo molar, siendo el primer molar el
que más se desgaste, hasta llegar prácticamente a destruirse en casos ex-
tremos.

ESTRUCTURAS DE SOPORTE Y RECAMBIO

Los dientes se fijan en los alveólos a través de un ligamento
articular (periodonto) (Fig. 30A) que se inserta en el cemento del diente
y en el proceso alveolar, lo que se observa en la radiografía como una
línea radio-opaca que aumenta de grosor a medida que va envejeciendo
el individuo.

Fig. 30.- Vista radiográfica de un individuo joven. A) periodon, B) Apexogénesis incom-
pleta, C) Raíz media del l.er molar temporal en reabsorción.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 115

En el sector en que se realiza el mayor esfuerzo masticatorio se
produce, a través del tiempo, una esclerosis del 1/3 apical de la cresta
alveolar, lo que se traduce en un aumento de la radioopacidad (Fig. 514).
Conjuntamente se origina una reabsorción de las crestas interalveolares y
una disminución de la densidad ósea, a nivel de las crestas interradiculares

(Eigi32)

Fig. 31.- Vista radiográfica de un individuo adulto. A) Cresta alveolar, B) Ápice cal-
cificado, C) Cuernos pulpares.

SIS

Fig. 32.- Vista radiográfica de un individuo viejo. Se indica las crestas interradiculares.

El recambio de la dentadura temporal se inicia con el reemplazo
de I, y continúa con LI, I,, L,. La corona ya calcificada de los gérmenes
dentarios correspondientes a los incisivos se puede apreciar claramente
en la radiografía cuando aun no comienza la calcificación de los gérmenes
de los molares permanentes (Fig. 33A). En el sector de los molares se reem-
plaza primero el 3er. molar temporal y, posteriormente, el 2? y el 12.

116 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

En el diente recién erupcionado el ápice de las raices no está
totalmente calcificado (apexogénesis incompleta) y las cámaras pulpares
presentan cuernos muy amplios (Fig. 305). Con el transcurso del tiempo
se completa la calcificación del ápice y se comienza a producir retracción
de los cuernos pulpares (Fig. 31C).

Fig. 33.- Vista radiográfica del maxilar inferior (sector de los molares) de un individuo
en etapa de recambio: A) Condición de desarrollo en que se encuentran los gérmenes
dentarios de la dentadura definitiva.

Fig. 34.- Vista radiográfica del maxi-
lar inferior (sector de los incisivos)
del mismo individuo: A) Condición
de desarrollo en que se encuentran
los gérmenes dentarios de la denta-
dura definitiva.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 55, 1984. 117

CONCLUSIONES

1.- Las características generales de la dentadura del pudú corresponden
a las de los rumiantes, con dientes del tipo selenodonto (en forma de
media luna).

2.- Las coronas de los dientes no crecen durante la vida del individuo,
por lo que en los especímenes viejos es dable observar un gran des-
gaste, e incluso fractura de las piezas dentarias comprendidas en el
sector de mayor esfuerzo masticatorio (entre el 2% premolar y el 29
molar).

3.- Las estructuras Óséas se van haciendo más densas con la edad en las
zonas apicales para contrarrestar, probablemente, la disminución de
la zona de soporte debido a la atrofia marginal horizontal que se va
produciendo a nivel del reborde alveolar.

4.- Las piezas dentarias recién erupcionadas presentan en las superficies
oclusales detalles más marcados, que van desapareciendo a lo largo
del tiempo debido al desgaste.

5.- Las diferencias anatómicas observadas entre la dentadura temporal
y permanente, especialmente notorias en el tercer molar inferior
temporal, permiten diferenciar si el individuo es adulto o no y esta-
blecer mediante estudio radiográfico el grado de desarrollo de él.

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PAVAARDOLÍGIA

pe

Soc. Bol. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 119 - 124, 1984. 119

MICROSCOPIA CUANTITATIVA Y MADUREZ SEXUAL DE
TRUCHA ARCO IRIS, SALMO GAIRDNERIT RICHARDSON, 1836

Quantitative microscopy and sexual maturity of rainbow trout,
Salmo gairdnerii Richardson, 1836.

JOSE MORILLAS A y HUGO VALERIA L.*

- RESUMEN
El presente trabajo entrega resultados de un ensayo de microestereología
aplicada al estudio de madurez sexual y cambios histológicos en hembras de trucha
arco iris (Salmo gairdnerii R.).
Se estableció cinco componentes histológicos, cuya presencia cuantitativa
fue analizada en muestras de ovarios previamente catalogados según una escala de
madurez empleada por piscicultores.

Se propone un esquema de los cambios histológicos, sobre la base de la
información estereológica.

ABSTRACT
Results of microstereological methods, applied to the study of sex maturity

and histological changes of females of rainbow trout (Salmo gairdnerii R.) are pre-
sented.

The quantitative presence of five histological items were analyzed on pre-
viously catalogued samples of ovaries with a maturity table used by fish culturists.

A scheme of histological changes based on stereological information is pro-
posed.

Keywords: Histology, Quantitative Microscopy. Rainbow trout, Pisces Salmoniformes.

INTRODUCCION

Los numerosos métodos que se ha desarrollado para definir mate-
máticamente las relaciones entre parámetros tridimensionales y datos
bidimensionales, se originaron cuando el geólogo francés Delesse, en 1847,
encontró que los volúmenes de los componentes líticos eran proporcio-

*Laboratorio de Histología y Microscopía Electrónica. Departamento de Biología y Tecnología del Mar.
Pontificia Universidad Católica de Chile, Sede Regional Talcahuano, Chile.

120 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

nales a la sección de sus áreas. Esta disciplina actualmente denominada
estereología, ha sido aplicada exitosamente en una gran variedad de
campos y con una difusión notable en Biología, Medicina, Geología, Meta-
lurgia (Schaefer, 1970).

En Biología, ha sido posible efectuar con éxito análisis estereo-
lógicos de estructuras subcelulares (Mathieu y Messier, 1973; Weibel y
Bolender, 1973; Rohr et al., 1976; Díaz, 1977), y también efectuar com-
paraciones entre observaciones morfológicas cuantitativas y datos bioquí-
micos (Staúbli, Hess y Weibel, 1969; Wibo et al., 1971).

Existen antecedentes sobre estudios microestereológicos efectua-
dos en animales marinos, con el fin de analizar su ciclo reproductivo
(Schuldt, 1978), pero las investigaciones efectuadas en esta área son escasas.

En el presente trabajo, se entrega resultados de un ensayo de
microestereología aplicada al conocimiento de la dinámica histológica de
gónadas femeninas de trucha arco iris, Salmo gairdnerii R.

MATERIALES Y METODOS

Ovarios de trucha arco iris, Salmo gairdnerii R., procedentes de
la piscicultura Polcura (37918"S; 71229"W), fueron catalogados por pisci-
cultores de acuerdo a una escala visual de madurez de 1 a VI (Ledermann,
com. pers., 1978) y fijados en formol al 10%. Se obtuvo secciones histoló-
gicas de gónadas incluidas en parafina de los estadios 1, II, III y IV.

El análisis estereológico se efectuó mediante el empleo de un
retículo de 42 puntos (Weibel et al., 1966).

Los componentes histológicos considerados fueron: tejido con-
juntivo, oocitos inmaduros tipo 1, tipo 2, tipo 3 y oocitos maduros.

Sobre la base del análisis de 20 secciones de ovarios por cada
estado de madurez, se calculó: porcentaje de cada componente (%1), pro-
porcionalidad de puntos de referencia sobre el componente (Pp), disper-
sión relativa (er), dispersión porcentual (100..r). Para los cálculos señalados
anteriormente se siguió en nomenclatura y fórmulas a Weibel et al., (1966),
Schaefer, Op. cit., y Gander (1970). Se aplicó el test de distribución x'
de Pearson (Sokal y Rohlf, 1979).

RESULTADOS

A. Descripción de los componentes considerados en los análisis estereo-
lógicos:

a. Tejido conjuntivo: corresponde a un tejido conjuntivo laxo
típico.

b. Oocitos inmaduros tipo 1 (oocitos basófilos): poseen un diámetro
que oscila entre 100 a 300u4m. Presentan citoplasma basófilo y
homogéneo; núcleo vesiculoso y esferoidal; nucléolo único y
central.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 121

c. Oocitos inmaduros tipo 2 (con vitelogénesis lipídica incipiente):
poseen un diámetro que oscila entre 300 a 500um. Citoplasma
basófilo y vacuolado; núcleo vesiculoso con nucléolos múltiples
y periféricos.

d. Oocitos inmaduros tipo 3 (con vitelogénesis lipídica y proteica):
Presentan un diámetro que oscila entre 600 a 1.5004m. Cito-
plasma eosinófilo, granuloso y vacuolado; los límites nucleares
son a veces imprecisos.

e. Oocitos maduros: Su diámetro oscila entre 1600 a 3000um. Po-
seen granos vitelinos voluminosos; no se distingue zona nuclear
con facilidad. Poseen zona pelucida.

B. Análisis de microestereología:

El análisis estereológico de las secciones gonádicas, entregó re-
sultados de proporcionalidad de componentes para cada estado de
madurez (Tabla 1).

Los valores de proporcionalidad de los componentes, al ser
representados conjuntamente en un gráfico, indican la composición
cuantitativa de las gónadas en cada estado de madurez analizado (Fig.
1). La distribución x? de Pearson (Sokal y Rohlf, op. cit.) de las
proporciones del componente tejido conjuntivo versus el resto de
los componentes, dio valores de P que entre los estados I y II no fue
significativo, entre 1 y MI P < 0.05, entre 1 y IV, Il y III, ll y UV,
TI y IV el valor de P < 0.001.

La proporción de oocitos inmaduros tipos 1 y 2 con respecto al
resto de los componentes histológicos en cada estado de madurez,

entregó los siguientes valores de P: entre 1 y II no significativo, entre
I y UL EU yav., ll y ML. Ey VETIL y IV" 0.001

TT. AVE TAS OL

Proporcionalidad de puntos de referencia sobre cada ítem y su dispersión porcentual
en cuatro estados de madurez.

Estado de Madurez Visual
Item o
Componente I II VTA IV
Tejido
Conjuntivo VA Do 1 as o UA A
Oocitos
Inmaduros 0.2804 5.7% 0.2463 5.29%, 0.0211=3-29.8% 0.0
Tipo 1
Oocitos
Inmaduros 0.41493+ 4.29% 0.4223+ 3.5% 0.0330-15.6%, 0.0274=-32.89,
Tipo 2
Oocitos
Inmaduros 0.0 0.0 0.01532-35.0% 0.0182=-36.9%,
Tipo 3
Oocitos
Maduros 0.0 0.0 0.6692+ 3.0% 0.8323 2.49,

129 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

La histología ovárica de Salmo gairdnerii R., se ajusta a las
descripciones para otras especies de teleósteos (Andreu, 1951; Christian-
sen, 1971). La estructura de los diversos tipos de oocitos es similar a los
antecedentes de otras especies, salvo diferencias en los rangos de dimen-
siones.

Los resultados de los análisis estereológicos, permiten conocer
las proporciones de los componentes en cada estado visual de madurez
(Tabla I). A consecuencia de lo anterior, es posible comparar la compo-
sición cuantitativa de las gónadas en los distintos estados de madurez y
detectar variaciones de la proporción de un componente determinado
durante la maduración gonádica (Fig. 1).

R

"

1.0

0.1

00 - O _—> —_
1 1 111 IV Madurez

Fig. 1.

Fig. 1.- Composición cuantitativa de las gónadas en los estados de madurez analizados.

A = tejido conjuntivo 2 = oocitos maduros

E
lA

oocitos tipo 1 O = oocitos tipo 3

Il

oocitos tipo 2

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 123

AS
pa

gz

a

Fig. 2.- Esquema que superpone la composición cuantitativa y la observación cualitativa
de los ovarios de Salmo gairdnerit en cuatro estados de madurez.

La proporción de tejido conjuntivo disminuye significativamente
(P < 0.001) a medida que es mayor el estado de madurez.

Al aplicar el test de chi-cuadrado a las proporciones de las for-
mas más inmaduras de oocitos (tipos 1 y 2), versus el resto de los com-
ponentes en cada estado de madurez, se observó que la diversidad de
esas proporciones es, estadísticamente significativa (P < 0.001).

124 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Para ilustrar la comparación entre la observación cualitativa y
la información cuantitativa, se propone un esquema de los cambios histo-
lógicos ováricos de Salmo gairdnerii durante la madurez sexual (Fig. 2).

Sobre la base de los resultados del presente ensayo, se puede
concluir que las técnicas de microscopía cuantitativa representan una
herramienta útil para cuantificar los cambios histológicos que ocurren
en las gónadas de peces. Estas técnicas, optimizadas, servirían para em-
prender estudios sobre la biología reproductiva de recursos marinos.

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen al Prof. Juan Ledermann, quien hizo
posible contar con material biológico para el presente estudio, y al Dr.
Mario George—-Nascimento, por sus indicaciones en el análisis estadístico
y la revisión crítica del manuscrito.

Este trabajo fue financiado por el Proyecto INB-007-—B (1978)
de la División de Investigación, Pontificia Universidad Católica de Chile,
Sede Regional "Talcahuano.

Agradecemos a la Srta. María Cristina Durán por el esmerado
mecanografiado del trabajo.

BIBLIOGRAFIA

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eii E: 0% ¡le

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 127 - 133, 1984. 127

LERNANTHROPUS GUACOLDAE SP. N. (COPEPODA:
LERNANTHROPIDAE), PARASITO DE SCIAENA DELICIOSA
(TSCHUDI, 1844) (PISCES: SCIAENIDAE), EN CHILE

Lernanthropus guacoldae sp. n. (Copepoda Lernanthropidae), parasite
of Sciaena deliciosa (Yschudi, 1844) (Pisces: Sciaenidae) from Chile

CESAR VILLALBA S.* y JACQUELINE FERNANDEZ B.*

RESUMEN

Se describe Lernanthropus guacoldae sp. nm. (Copepoda: Lernanthropidae),
parásito branquial de Sciaena deliciosa (Tschudi, 1844) (Pisces: Sciaenidae) en Bahía de
Concepción (36940'S; 7300), Chile, constituyendo ésta la primera especie del género
señalada para las costas de Chile.

Algunas de las características distintivas son: la placa dorsal no cubre el génito-
abdomen; placa frontal y proceso auricular del cefalotórax desarrollado; terceras patas
proyectadas postero-ventro-lateralmente respecto al cuerpo, y con una seta flageliforme
lateral a la base del exopodito del primer pereiópodo.

ABSTRACT

Lernanthropus guacoldae sp. n. (Copepoda: Lernanthropidae), a parasitic
copepod found on gill filaments of Sciaena deliciosa (Yschudi, 1844) (Pisces: Sciaenidae),
taken from Bahía de Concepción (36940'S; 7300) Chile, is described. Some distinct
characteristics are: dorsal plate not covering the genito-abdomen; frontal plate and
auricular processes of the cephalotorax developed; third legs diagonally and backwardly
emerging from thorax, and with a flagelliform setae laterally close to the exopodite
of the first pereiopod.

Keywords: Copepoda, Lernanthropidae, Fish parasites, South Eastern Pacific.

INTRODUCCION

Con excepción de LernanthroPus sp. n. (Wilson, 1921), parásito de
Scorpis chilensis Guichenot, de la Isla de Juan Fernández, no han sido
señaladas especies de este género para Chile (Atria, 1979); la única especie

*Depto. de Zoología, Fac. Cs. Biol. y Rec. Nat. Casilla 2407, Universidad de Concepción, Concepción, Chile.

128 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

mencionada para el Pacífico Sur Oriental es Lernanthropus pacificus Oliva
y Durán, 1982, parásito de Sciaena gilberti de Callao, Perú (Oliva y Durán,
1982).

En el presente trabajo se describe Lernanthropus guacoldae sp.
n., parásito branquial de Sciaena deliciosa (Vschudi, 1844) de la Bahía de
Concepción, Chile.

Género: Lernanthropus De Blainville, 1822

Lernanthropidae, Kabata, 1979. Hembra: Cabeza fusionada con el primer
segmento torácico, márgenes del cefalotórax curvados ventralmente; se-
gundo y tercer segmentos toráxicos fusionados; cuarto segmento fusionado
con el segundo y tercero, raramente libre, cubierto con una placa dorsal,
la cual se extiende posteriormente, pudiendo cubrir el segmento genital
y el abdomen bisegmentado. Ramas caudales presentes, aplastadas o sub-
circulares en sección transversal, aguzándose distalmente. Huevos unise-
riados aplastados; bolsas ovígeras generalmente largas, proyectándose pos-
teriormente desde el segmento genital. Primera antena con segmentos dife-
renciados o más o menos fusionados; segunda antena subquelada; palpo
mandibular presente; maxila bisegmentada; maxilípedo subquelado. Pri-
meros cuatro pereiópodos birramosos; ramas del primer y segundo pares
rudimentarias, unisegmentadas; las del tercer par lamelares, fusionadas,
proyectadas en ángulo recto o diagonales desde la superficie ventral; ramas
de los cuartos pereiópodos generalmente separadas, lamelares o cilíndricas,
que se extienden posteriormente; quinto par de pereiópodos unirrámeos,
rudimentarios o sin ellos.

Especie tipo: L. musca De Blainville, 1822.

Lernanthropus guacoldae sp. n.
Descripción de la hembra:

Cefalotórax trapezoidal fusionado con el primer segmento torá-
cico; extremo posterior más ancho que el anterior, con proyecciones late-
rales y placa frontal bien desarrolladas (Figs. 1, 2 y 3).

Tronco en vista dorsal sin indicios de segmentación, que se en-
sancha progresivamente hacia el extremo posterior. Placa dorsal notoria,
subcircular, sin escotadura, proyectada hasta el nacimiento de las quintas
patas, sin cubrir el génito-abdomen.

Primera antena (Fig. 4) con 6 segmentos, el primero de ellos
de mayor tamaño que el resto, robusto, ligeramente curvado en sentido
posterior; segmentos 2, 3, 4 y 5 aproximadamente de igual longitud y ar-
mados con una espina; último segmento más angosto que los anteriores
y armado apicalmente con numerosas espinas. Segunda antena (Fig. 5)
subquelada, bisegmentada. Segmento basal robusto, liso, más angosto dis-
talmente; garra terminal (subquela) fuertemente curvada, casi en ángulo
recto.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Tomo 55, 1984. 129

Figs. 1-10. Lernanthropus guacoldae sp. n. (hembra). 1.- Vista dorsal; 2.- Vista ventral;
3.- Vista lateral; 4. Primera antena; 5.- Segunda antena; 6.- Primera maxila; 7.- Idem,

detalle del exopodito; 8.- Segunda maxila; 9.- Idem, detalle del segmento distal; 10.-
Maxilípedo.

130 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

Mandíbula (Fig. 11) con 7 dientes en su margen interno distal.
Primera maxila birrámea (Fig. 6); exopodito cilíndrico, armado distalmente
de tres espinas, siendo la mediana de mayor tamaño (Fig. 7); endopodito
pequeño, con una espina apical de mayor tamaño que las del exopodito.
Segunda maxila (Fig. 8) bisegmentada; segmento basal robusto; segmento
terminal con una espina fuerte y curvada en el tercio distal y 15 dientes
dispuestos en dos corridas irregulares en su extremo cóncavo distal (Fig. 9).
Maxilípedo (Fig. 10) bisegmentado, subquelado; segmento basal fuerte
con un pequeño tubérculo en la región medio-interna. Garra terminal
curva, con una seta en la parte media de la curvatura interna.

Figs. 11-18. Lernanthropus guaco ldae' sp. n. (hembra). 11.- Mandíbula; 12. Región
génito-abdominal; 13.- Primeras patas; 14.- Idem, endopodito; 15.- Idem, detalle del
exopodito; 16.- Segundas patas; 17.- Idem, endopodito; 18.- Idem, exopodito.

Primeras patas (Fig. 13) birrámeas. Exopodito unisegmentado con

-5 espinas terminales triangulares, aproximadamente de igual tamaño (Fig.
15); lateral a la base del exopodito, en su lado externo, presenta una papila
-con una seta flageliforme en su extremo; endopodito también unisegmen-
tado de menor tamaño, con una espina recta y fuerte en su extremo distal

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 131

y numerosas espinas pequeñas en la base de ésta; presenta, además, una
espina recta lateral, próxima a la base del endopodito (Fig. 14). Segundas
patas (Fig. 16) birrámeas, ambas ramas unisegmentadas; exopodito armado
con 5 espinas distales, dispuestas irregularmente en 2 grupos; cercano a
la base se encuentra una papila con una espina de menor tamaño que las
distales (Fig, 18). Endopodito subcilíndrico provisto en su extremo distal
de una espina recta más larga y angosta que las del exopodito y numerosas
espinas pequeñas (Fig. 17). Terceras patas (Figs. 2, 3) birrámeas, con ambas
ramas fusionadas, laminares, con un ligero ensanchamiento en la base,
proyectadas postero—ventro-lateralmente. Su extremo alcanza el borde
distal de la placa dorsal. Cuartas patas birrámeas (Figs. 2, 3), cilíndricas,
de mayor tamaño que el cuerpo; rama externa más larga que la interna
y diferenciadas cerca de su base. Quintas: patas unirrámeas, cilíndricas,
ubicadas detrás de las cuartas patas; su longitud no alcanza el extremo de
las láminas caudales.

Región genital y abdominal poco diferenciadas, siendo la genital
algo más ancha que la abdominal, presentando esta última una ligera esco-
tadura en su extremo (Fig. 12). Láminas caudales cilíndricas, inermes, de
menor tamaño que las quintas patas. Sacos ovígeros cilíndricos, de mayor
tamaño que las cuartas patas, con huevos disciformes dispuestos uniseria-
damente (Fig. 12).

Macho: Desconocido.
MEDIDAS DE LOS EJEMPLARES: (En m.m.).

Holotipo: Largo total (sin sacos ovígeros): 14.5; Longitud desde
el borde de la placa frontal a la placa dorsal: 6.1; Terceras patas: 2.5;
Cuartas patas: rama externa, 9.8; rama interna, 8.0; Quintas patas, 1.4;
Láminas caudales: 1.2; Sacos ovígeros: 12.1.

Paratipos: (la primera medida corresponde al promedio; las me-
didas entre paréntesis a los valores máximo y mínimo). Largo total (sin
sacos Ovigeros): 13.0 (14.3 — 11.9); Longitud desde el borde de la placa
frontal a la placa dorsal: 5.5 (5.7 — 5.3); Terceras patas: rama externa,
8.2 (9.6 — 6.9); rama interna, 6.5 (7.5 —5.7); Quintas patas: 1.3 (1.5 — 1:0);
Láminas caudales: 1.1 (1.2 — 1.0); Sacos ovigeros: 9.4 (11.1 — 6.5).

MATERIAL ESTUDIADO:

Holotipo: 1 hembra, Bahía de Concepción, Junio 1983, MZUC
N9 3140, Paratipos: 1 hembra, Bahía de Concepción, Junio 1983, MZUC
N2 3141-7; 2 hembras, Concepción (Mercado Central), 4 Enero 1984,
MZUC N? 3142; 2 hembras, Concepción (Mercado Central), 7 Enero 1984,
MZUC N? 3143. Todo el material estudiado recolectado por los autores.

Hospedador: Sciaena deliciosa (Tschudi, 1844) (hospedador tipo).

Hábitat: Base de los filamentos branquiales., -

Eocalidad: Bahía de Concepción (36%40'S; 73%0).

Etimología: Se dedica esta especie a la Sra. Guacolda Atria, por su contri-
bución al conocimiento de los copépodos parásitos chilenos.

132 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

TABLA 1

Principales caracteres diferenciales de L. guacoldae sp. n. con sus especies afines

CARACTER L.GISLERI L.RATHBUNI L.PACIFICUS L.GUACOLDAE
NO segmentos 12 antena 7 7 6 6
Gancho en la base de la

22 antena Presente Ausente Ausente Ausente
N9 de dientes en la subquela

de la 22 maxila 24 ? 15 15

Espina en el segmento
basal del maxilípedo Presente Ausente Ausente Presente
(o tubérculo)

Seta en la subquela
del maxilipedo Presente Ausente Ausente Presente

NO de espinas en el exopodito
de la 12 pata 5 4 5 5

Seta flageliforme lateral
al exopodito de la Ausente Ausente Ausente Presente
primera pata

N0 de espinas distales
en el exopodito de la 5 5 3 5
22 pata

Espina en la base del
exopodito de la 22 pata Presente Ausente Ausente Presente

Espinas apicales pequeñas
en el endopodito de la Ausentes Ausentes Ausentes Presentes
22 pata

Espina o seta distal en el
endopodito de la 22 pata Presente Presente Ausente Presente

Proyección de las 325 patas
respecto al cuerpo Perpendic. Perpendic. Perpendic. Diagonales

Ramas de las 4%s patas Desiguales Iguales Iguales Desiguales

Espinas o setas en las
ramas caudales Presentes Ausentes Ausentes Ausentes

Placa dorsal cubre la región
génito-abdominal Si Si No No

Escotadura en la
placa dorsal Ausente Presente Ausente Ausente

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 133

DISCUSION

Lernanthropus guacoldae sp. n. presenta semejanzas con L. gisleri
Van Beneden, 1852 (fide Yamaguti, 1936), L. rathbuni Wilson, 1922, y L£.
pacificus Oliva y Durán, 1982, en la forma general del cuerpo y la estruc-
tura de algunos de sus apéndices. Las diferencias principales de la nueva
especie con las especies antes mencionadas, se señalan en la Tabla 1.

La nueva especie presenta, además, diferencias en cuanto a ta-
maño, proporciones de sus apéndices, hospedador y localidad con las otras
3 especies afines.

AGRADECIMIENTOS

Se agradece al Profesor Hugo 1. Moyano por la revisión crítica
del manuscrito y sus valiosas sugerencias.

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 135 - 146, 1984. 135

EFECTOS DEL AFLORAMIENTO COSTERO EN LA DIAGENESIS
TEMPRANA DE LOS SEDIMENTOS DE LA BAHIA DE
CONCEPCION, CHILE

Coastal Upwelling Effects on the Early Diagenesis of Sediments
in Concepción Bay, Chile

RAMON AHUMADA!, ROBERTO MORALES?, ANNY RUDOLPH* y
PATRICIA MATRAI.!.

RESUMEN

Durante el período de surgencia, aguas subsuperficiales pobres en oxígeno
y ricas en nutrientes se introducen en la Bahía de Concepción. Se genera así una alta
producción local del sistema pelágico. La sobreproducción se incorpora a los sedimentos
provocando una serie de: cambios físico-químicos de las aguas y sedimentos, debido
a la oxidación de la materia orgánica. En un intento de hacer comprensibles estos
procesos se discute los cambios producidos y se propone un modelo general que expli-
caría dichos cambios.

ABSTRACT
During the upwelling period of Concepción Bay, poor oxygen and rich nu-
trients water intrudes into it. Thus, a local suplus production of the pelagic system
is generated. Part of the organic matter thus produced sinks and settles on the bottom
of the bay. Physico-chemicals changes in water and sediments occur during the oxida-
tion of organic matter. In order to understand these processes, changes produced are
discussed and a general model that explains such changes is proposed.

Keywords: Coastal zone, Nutrients, Anoxic sediments, Diagenesis model, Geochemistry.

INTRODUCCION

La Bahía de Concepción es una de las escasas bahías que existen
en latitudes bajas y medias del margen oriental del Pacífico Sur. Posee
una superficie de ca. 190 km? y se localiza en los 36%40' Lat. Sur y 73202
Long. Oeste. A lo largo del borde oriental del Pacífico existe un flujo

1Departamento de Biología y Tecnología del Mar. Pont. Universidad Católica de Chile, Sede Talcahuano.
2Departamento de Física, Facultad de Ciencias. Universidad de Chile.

3Departamento de Química. Pont. Universidad Católica de Chile, Sede Talcahuano.

136 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

subsuperficial tipo jet hacia los polos, de aguas que poseen un bajo conte-
nido de oxígeno disuelto y altas concentraciones de nutrientes (Silva y
Konow, 1975; Shaffer, 1982 y Robles, 1978). Esta masa de agua ha sido
denominada Aguas Ecuatoriales Subsuperficiales (AESS) y es la que man-
tiene la alta fertilidad de la zona costera de Perú y Chile, mediante la
entrada de nutrientes a la capa fótica durante los eventos de surgencia.

En la zona costera frente a Concepción, se observa un predominio
estacional de los vientos del cuadrante Sur durante mediados de primavera,
verano y comienzos de otoño, lo que favorece los eventos de surgencia
(Ahumada y Chuecas, 1979).

Durante este período, la bahía desarrolla condiciones excepcio-
nales de fertilidad que dan origen a aguas discoloreadas, ocasionales mor-
tandades masivas de organismos marinos (Ahumada y Arcos, 1976) y
sedimentos negros reductores de fondo, con alto contenido de materia
orgánica (Falke, 1939 y 1950; Gallardo et al., 1972; Rudolph et al., en
prensa). El bajo contenido de oxígeno de las AESS, provoca condiciones
especiales para la remineralización de la materia orgánica e incrementa
los sedimentos reductores de la bahía.

Este trabajo, intenta explicar en forma general algunos de los
procesos que estarían implicados en la diagénesis temprana de estos sedi-
mentos.

MATERIALES Y METODOS

La información hidrográfica utilizada en el presente trabajo
corresponde a muestreos mensuales de rutina, realizados en la Bahía de
Concepción y áreas costeras adyacentes, desde octubre de 1979 a mayo de
1982. Las estaciones hidrográficas se muestran en la Fig. 1 y han sido
designadas por números. Durante el año 1981 se comienza el análisis
químico de los sedimentos (Rudolph et al., en prensa). En este trabajo,
se presentan los resultados de algunos sitios representativos y que han
sido indicados con letras en la Fig. 1.

Las muestras hidrográficas fueron colectadas en muestreadores
de PVC, del tipo Niskin de 4 1 de capacidad. En cada estación hidrográfica
se obtuvo secuencialmente muestras de: Oxígeno disuelto, sulfuros, pH,
amonia, nitritos, nitratos, fosfatos, silicatos, clorofilas y salinidad. Para el
análisis de nutrientes, las muestras de agua fueron filtradas en 0.45 micras
y analizadas en el laboratorio en un período menor de seis horas después
de su colección. Para los efectos de este trabajo, las estaciones hidrográ-
ficas del 1 al 4 fueron consideradas como de comportamiento externo de
la bahía y las estaciones de 4BG a 7 como comportamiento propio de la
bahía.

Los sedimentos fueron colectados con una draga tipo Van Veen
y/o un sacatestigo de plexigass. Submuestras obtenidas de la draga fueron
secadas a 60%C durante 12 horas y tamizadas en 0.45 mm para el análisis
de materia orgánica, carbono orgánico, nitrógeno orgánico y fósforo total.

En las muestras obtenidas con sacatestigo se midió Eh y pH. El
agua intersticial de los sedimentos fue extraida para análisis de sulfuro
de hidrógeno y el sedimento secado a 60%C por 12 horas para análisis
elemental.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 137

Er

EN
de ana CONCEPCION
EA

. MM
EN e7

Sondas y alturas en metros

CARTA 601, ARMADA DE CHILE
MODIFICADA.

DES EEE ES $ EA O + O E - A? A AS (A

Fig. 1.- Ubicación de las estaciones hidrográficas (0) y sitios de muestreo de sedimentos
(x), en la Bahía de Concepción y áreas costeras adyacentes.

:138 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

El análisis elemental del sedimento seco, se llevó a cabo usando
el método PIXE (Particle Induced X-Ray Emission) y utilizando el ciclo-
trón de la Universidad de Chile, Santiago. Réplicas de las muestras fueron
enviadas al Croker Nuclear Laboratory de la Universidad de California,
Davis, para análisis. Los resultados obtenidos muestran una incerteza de

un 207:

En general, referencias para los métodos analíticos utilizados son
presentados en las "Tablas 3 y 4.

RESULTADOS Y DISCUSION

Observaciones realizadas en octubre de 1979, en las aguas cos-
teras frente a la Bahía de Concepción, permitieron establecer las carac-
terísticas de las AESS antes de aflorar. Estos valores fueron tabulados y
se muestran en la Tabla 1.

Durante las estaciones favorables a los eventos de surgencia,
valores característicos de las AESS han sido observados en las aguas inte-
riores a la Bahía de Concepción (Arcos, 1981; Ahumada et al., 1983).
Sin embargo, los valores de nutrientes y oxígeno disuelto se modifican
en la capa fótica( 1. €., 1% de iluminación corresponde a ca. 15 m.). Los
nutrientes disminuyen considerablemente, los nitratos se agotan y el oxí-
geno alcanza valores de sobresaturación que llegan a un 180%. Esta situa-
ción es consecuente con la alta biomasa eo cie registrada para esos
períodos (e. g., 50 mg Cl,m”?).

Sobre la base de las concentraciones de nutrientes de las AESS
y los requerimientos del fitoplancton (Redfield et. al., 1963), se establece
que los compuestos del nitrógeno y especificamente los nitratos, se com-
portan como limitantes para el crecimiento de los fitoplancteres (Tabla 2).
Sobre la base de los valores de esta tabla, es estimó en 2.2 g CG m* la ferti-
lidad potencial de las AESS, o bien, ca. 4.4. g Materia Orgánica m”* como
producción potencial. Se asume que el C orgánico corresponde a un 509%,
de la Materia Orgánica. Valores experimentales de 3.5 g C org. m* han
sido encontrados para la MOP (A. Acuña, comunicación personal) en la
Bahía de Concepción.

La alta producción de la Bahía origina una sobreproducción en
el sistema pelágico y una parte importante de la materia orgánica sedi-
menta. Las condiciones de sedimentación, durante el período de surgencia
determinan que las características subóxicas de las aguas del fondo de
la bahía generen procesos geoquímicos de oxidación y reducción en los
sedimentos y aguas adyacentes a ellos.

139

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

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140 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

En estas condiciones las modificaciones principales se traducen

a) Que la diagénesis temprana de los sedimentos recientes, ocurre en
condiciones subóxicas (columna de agua) o anóxicas (proceso de las
aguas intersticiales de los sedimentos).

b) Cambio de las condiciones ambientales químicas del medio: pH cer-
canos a la neutralidad y Eh negativos.

c) Que, la sedimentación de la materia orgánica producida en exceso
(i.e., vía fotosíntesis y/o aportes por efluentes de desechos industriales
y domésticos) se Oxide en condiciones subóxicas y/o anóxicas, depen-
diendo del desarrollo del proceso de surgencia y del período estacional.

Con el propósito de reconocer algunos de los cambios que ocurren
en el interior de la bahía, durante la surgencia y, así, establecer algunas
reacciones químicas dominantes del sistema, se compara las características
de las AESS fuera de la bahía y después de un tiempo de residencia en
ella. Los cambios en las concentraciones y la presencia de nuevos com-
puestos en las aguas adyacentes al sedimento, son un índice de los procesos
que allí están ocurriendo.

Fróelich et al. (1979) han establecido un modelo para la diagé-
nesis de sedimentos con alta concentración de materia orgánica, que
podría ayudar a reconocer los cambios en la bahía. Sobre la base de este
modelo y conociendo algunas de las condiciones químicas ambientales
propias del sistema en estudio durante el afloramiento, se ha buscado
la presencia de los productos de reacción, tanto para la columna de
agua, como para los sedimentos.

En la Tabla 3, se ha resumido información de dos años de mues-
treos mensuales, presentando rangos de variación de los parámetros me-
didos en el interior de la bahía que considera sólo las concentraciones que
corresponden a valores de oxígeno disuelto menor de 1 ml 0,1*. Al com-
parar algunos de estos valores de concentración con los obtenidos para
la misma masa de agua fuera de la bahía, puede observarse:

1) Una disminución en el contenido de NO,”, los valores en el
rango inferior son de 12.3 umol 1”;

ii) Aumento en las concentraciones de NO,”, que pueden al-
canzar 5.8 umol 1”;

iii) Altas cantidades de NH.*, se ha detectado valores máximos
de 10.9 umol 1**;

iv) Concentraciones altas de PO,*, valores de 4.53 umol 1";

v) Presencia de sulfuro de hidrógeno en las aguas adyacentes
al fondo.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 141

TABLA 3
Rangos característicos de las aguas del mínimo de oxígeno en el interior de la Bahía
de Concepción.

VARIABLES RANGOS UNIDADES METODOS

S% 34.50-34.60 g/Kg Salinómetro de Inducción
TOC 9.00-11.50 0C Termómetros de Inversión
O, disuelto 0.10- 1.00 m0 172 Winkler

%, saturación 4 =15 To

N-NO,”7 12.30-28.50 y. mol 1-1 Strickland £ Parsons, 1972
N-NO,- 0.50- 5.98 y. mol 12 Strickland £ Parsons, 1972
N-NH,+ 0.06-10.90 poll Koroleff (Grasshoff, 1976)
P-PO,?- 2.55- 4.53 ¡y mol 1-1 Strickland £ Parsons, 1972
pH 7.38— 7.60 —- log [H*] Strickland £ Parsons, 1972
H.,S-S 0.45- 4.47 y mol 1-1 Fonselius (Grasshoff, 1976)
Sigma-t 26.40-26.60

Los cambios detectados al examinar la información resumida,
son confirmados aunque con menor resolución en la Fig. 2. Allí se muestra
un perfil de la Est. 5 durante el período de surgencia (Fig. 2A) de las AESS.
Si se compara los valores de la columna de agua bajo los 15 m de profun-
didad con los valores característicos de las AESS, se observa que los cambios
son consistentes con los descritos. La Fig. 2B, en cambio, muestra el mismo
perfil para un período de invierno. Las diferencias son significativas y,
es evidente, que las masas de agua comprometidas durante estos dos pe-
ríodos estacionales son diferentes.

Por otra parte, los resultados de análisis químicos realizados a
muestras de sedimentos negros anóxicos de la Bahía de Concepción son
entregados en la Tabla 4. Los sedimentos contienen un alto porcentaje

DABA
Rangos característicos de variables químicas de los sedimentos negros anóxicos de la
zona central interna en la Bahía de Concepcin.

VARIABLES RANGOS UNIDADES METODOS
pH 73-70 —log [H*] Medición directa (corr. Temperati
Eh (+100)-(-140) mV Medición directa, electrodos Eh.
H,S 0.0 —50 jmolIz Fonselius (Grasshoff, 1976)
Mat. Org. 16.17-10.87 9% peso base seca Combustión seca a 5500C
C. Org. 4.16- 2.22 9% peso base seca Gaudette et al (1974)
N. Org. 0.54— 0.30 9% peso base seca Kjeldahl combustión
CANA 9,85%, peso 11.49 prop. at.

Mat. Org./C. Org. 5.02 Y, peso base seca
Fe 55.58-40.57 mg/g Radiación X inducida (PIXE)
Si 21.25-15.76 mg/g Radiación X inducida (PIXE)
P 435-278 ppm Radiación X inducida (PIXE)

TOC 10 - 8.7

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

142

“2J509 e]
91q0S SeoIPJUEGOs sen3e se] 9p trouad1aAuo) ap opojiad [a UH (g *o193509 oju9rueJo[je sp opopiad un ajuemag ( y:soprpaw
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18/v0/ZZ 18/10/€l
S"15]3 S'153

(“) AVOIINNIOYA

(“) AVOIONNIOYA

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. "Pomo 55, 1984. 143

de materia orgánica (1.e., 16%; Rudolpk et al., en prensa), altas concen-
traciones de Fe sedimentario (+.e., 55.58-40.57 mg g”), altas concentra-
ciones de Si, presumiblemente, tecas de diatomeas (?.e., 21.25-15.76 mg
83), la constante presencia de H,S en el agua intersticial y una cantidad
de P significativa (3.e., 435-278 ppm).

70

60 DO SITIO 1
M SITIO 2
——= SITIO 3
(0)
E SO
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= S
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5 S
10 NN
S
| WN]
¡ S
0 MT : WN
HoNa=> Al si == SF Cor Ko Ca-* Ti -* Mn-- Fe y

EL EIMMIENFO'S

Fig. 3.- Concentraciones promedio de elementos químicos detectados en los sedimentos
de la bahía. Se consideró tres sitios representativos de los sedimentos.

La Fig. 3, muestra las concentraciones promedio para tres sitios
de muestreo que se establecieron en la bahía. El sitio 1 tiene sedimentos
con concentraciones bajas de materia orgánica (ca. 39), el sitio 2 y el sitio
3 poseen concentraciones altas, 14%, y 16%, respectivamente. Nueve de
los elementos que se muestran en el gráfico poseen concentraciones ma-
yores de 1 mg g”* con excepción del Mn que presenta concentraciones
menores. De ellos, el Fe muestra la más alta concentración, después cabe
destacar las altas concentraciones de Si, Ca, Ti, y S. Es curioso observar
que para: Fe, Mn, Ti, K, S y Si su concentración es menor cuando hay
menos materia Orgánica en los sedimentos.

"SOJUQUITPIS
so] 9p éumnua 10d 9jUSURIeIpawur senge sep us epeyaJap sauorenusduos sp orpauoid [op epeumss any “epezippn omppns sp UQrpe.uaduo) e] (p
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UDIDIÍNS SOJUIVITPIS SO] UY SOPPIJUOJUI SIJO[LA SOJE SO[ “OSIBQUIS UIS “¿UL Je SU YO IP $9 PIYLL P] a] sen3e ser exed oJ[ansIp 94 9p UPDeMUIIUO PT
“NOV [e oSoppue Opeopyru3is un U9Su9r) “OJe1Iu Pp SIUOMBIJUIUO) SP] MUI POUM IP YT (¿LU
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(SST y 3p orpauoid uprenusuos) 1 0 qu y e opuodsax1o) “¿ug 3e Su ¿868 9p OMANSIP OUISIXO IP JOTLA TH (e

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O“H0Z'661 9 :
980823 =069V OH 698,1 + =S 0/3 + +294 0919 + "Od'H + ¿N 89
+ "HN y9'S + FONH 9801 + “09 901. Os 043 + +H 03801 + *O%a4 08:93 + FONH 23:91 + “O 3868 + Cod*H) "HN) “(o "HD)

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SIANOYALOATA 44 SIJOLAADV VOILLALOdIH VOINVIOYO VIAALVIN

SIIVIOAVd SANOIOV AO

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 145

Por otra parte, los valores de pH cercanos a 7 y los valores de Eh
de — 140 mv en los sedimentos sugieren que en los fondos de la bahía
ocurriría un activo proceso de diagénesis de los sedimentos. Además, si se
considera las relaciones C:N:P en los sedimentos, se puede apreciar una
disminución de un orden de magnitud del C y N en relación al contenido
de P. Sin embargo, la relación CG:N es de 11.5 en proporciones atómicas,
insinuando, por tanto, su origen orgánico. De tal manera que la despro-
porción con el P, sólo podría explicarse como una acumulación de este
en el tiempo.

- Siguiendo el modelo de Fróelich et al., (1979) y tomando en cuenta
algunas relaciones estequiométricas, como la cantidad de oxígeno dispo-
nible y los cambios en las concentraciones de algunos oxidantes posibles
en el agua y sedimentos se propone un modelo para la bahía. Este consta
de cuatro ecuaciones parciales y una ecuación general que pretende, en
una primera aproximación, explicar la diagénesis temprana de los sedi-
mentos de la Bahía de Concepción.

De acuerdo al modelo propuesto, la limitación impuesta por el
oxígeno disuelto (1.e., menos de 1 ml O, 1”*) determina que los NO”, sean
reducidos para así oxidar la materia orgánica; posteriormente los aceptores
de electrones, serán el Fe** y, finalmente, los SO”,. El orden secuencial
de la utilización de los aceptores de electrones lo establece la energía
libre de Gibbs de las reacciones comprometidas.

Sin embargo, la lenta difusión y la escasa turbulencia de las
aguas intersticiales, serían los factores responsables para que las distintas
etapas del proceso de oxidación se realicen simultáneamente en sitios
muy cercanos.

Es probable, por lo tanto, que en capas más profundas de sedi-
mentos, ocurran procesos de fermentación con producción de CH,, como
lo demuestran algunas evidencias en áreas de la plataforma continental
adyacentes a la bahía (Gallardo, 1976 y 1977; Morita et al., 1981).

La aplicación del modelo permite explicar la coexistencia de
concentraciones de NO,”, NO,” y NH,* en las zonas cercanas al fondo, ya
que se producirían procesos de remineralización de la materia orgánica
acompañados de procesos de desnitrificación. Esto último explicaría tam-
bien la desproporción N/P en las aguas interiores y su contenido en los
sedimentos.

AGRADECIMIENTOS
Esta investigación fue financiada por la Dirección de Investiga-

ciones de la Pontificia Universidad Católica de Chile a través de los Pro-
yectos DIUGC 17/79 y DIUC 177/82.

146 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

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Bol. Soc. Biol Concepción, Chile. “Tomo 55, pp. 147 - 154, 1984. 147

COMPORTAMIENTO DE LAS ISOENZIMAS DE LACTATO
DESHIDROGENASA DE MACERADOS DE CEREBRO DE AKODON
OLIVACEUS PENCANUS PHILIPPI 1900, ALMACENADOS A
DISTINTAS TEMPERATURAS

Behavior of lactate dehydrogenase isozymes from Akodon olivaceus
pencanus Philippi 1900 brain homogenates stored at different temperatures.

ROLANDO MONTOYA, FARUK ALAY, EDUARDO KESSI,
JAIME VIDAL y JOSE CABELLO*

RESUMEN

El cerebro de A. olivaceus Pencanus presenta las cinco formas moleculares
características de lactato deshidrogenasa de mamíferos. El almacenamiento de los homo-
genizados a distintas temperaturas reveló una disminución de la actividad enzimática,
la que puede deberse a una labilidad aumentada de algunas isoenzimas que poseen la
más baja movilidad relativa en geles de poliacrilamida (A,, A¿B y A,B,). Se concluye
que la temperatura de almacenamiento más adecuada es -180 QC, ya que la pérdida de
actividad enzimática bajo estas condiciones es mínima,

ABSTRACT
Brain lactate dehydrogenase from A. olivaceus Pencanus shows the typical
five molecular forms of mammals. The storage of brain homogenates at different
temperatures shows a decrease in the enzyme activity which can be due to increased
lability of those isozymes (A,, A¿B, A,B,) displaying the lowest mobility in polyacry-
lamide gels. It is concluded that the most useful temperature storage is —-180 0C,
because the enzyme activity loss was minimal under this condition.

Keywords: Activity. Conservation. Electrophoresis. Isozymes lactate dehydrogenase.

INTRODUCCION

Numerosa es la bibliografía que informa de la utilización de las
distintas formas moleculares de una enzima (isoenzimas) para examinar la
estructura genética de poblaciones animales y vegetales (Valenta, 1977;
Blanco, 1964; Fieldes, 1973; Pai, 1973).

*Departamento de Biología Molecular, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad
de Concepción. Casilla 2407, Apartado 10, Concepción, Chile.

148 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

Lactato deshidrogenasa LDH (E. C. 1.1.1.27) es uno de los sis-
temas enzimáticos más conocidos y utilizados debido a su amplia dis-
tribución en los distintos tejidos y facilidad de detección; los estudios
realizados para esta enzima en mamiferos, utilizando principalmente so-
portes de almidón demuestran la existencia de cinco zonas de actividad
enzimática, cada una de las cuales corresponde a un tetrámero formado
por la asociación al azar de dos cadenas polipeptídicas que resultan de la
expresión de dos genes separados (Markert et al, 1975).

Estudios anteriores realizados sobre poblaciones de roedores endé-
micos de Chile del género Akodon desde el punto de vista de sus carac-
teres morfológicos (Yáñez, 1979) y de sus cromosomas (Spotorno, 1976;
Montoya, 1977; Rodríguez, 1983) han demostrado notables similitudes
entre las especies, por lo que la siguiente etapa de investigación debe
corresponder a estudios que permitan establecer diferencias precisas. Para
esto, las isoenzimas constituyen una de las herramientas más útiles en el
reconocimiento de especies, con un alto grado de seguridad. Sin embargo,
existe el peligro de que por mal manejo de las muestras se interpreten
como siendo de base genética, las alteraciones ambientales que pueden
producirse en los zimogramas. Uno de los factores importantes a considerar
es la temperatura de conservación de las muestras.

Las razones expuestas nos llevaron a investigar el comportamiento
de LDH bajo distintas condiciones de almacenamiento para macerados de
cerebro de A. olivaceus que en matrices de poliacrilamida presenta también
las cinco formas moleculares características de los mamíferos,

MATERIALES Y METODOS

REACTIVOS

Reactivos generales, grado proanálisis, (Merck, Darmstadt, RFA).

Nitroblue tetrazolium (NB'D), fenacina metosulfato (PMS), nico-
tinamida adenín dinucleótido, formas oxidadas y reducidas (NAD* y NADH
+ H>) (Sigma, St. Louis, Missouri, USA).

MATERIAL BIOLOGICO

Los especímenes de A. olivaceus pencanus fueron capturados vivos
en la zona de Concepción (Barrio Universitario).

Se analizaron 15 ejemplares (73, 8?) los que presentaron un
patrón idéntico de isoenzimas.

Una vez sacrificados se les extrajo y homogenizó el cerebro en
tampón Tris. HCL 0.01 M, pH: 7.5, beta mercaptoetanol 0.001 M y
EDTA. Na, 0.001 M, posteriormente se centrifugó a 13800 x g por 30
minutos a 09C. Alícuotas de estos homogenizados se almacenaron a + 4%C
(T1), 09€ (T2), -4%C (T3), -30%C (T4) y -1809C (15) hasta el momento
de su utilización.

ACTIVIDADES ENZIMATICAS

La determinación de actividades enzimáticas de LDH se reali-
zaron en un espectrofotómetro Gilford Modelo 240, según técnica des-
crita por Markert et al (1965).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 149

CONCENTRACION DE PROTEINAS

La determinación de la concentración de proteínas se realizó
según el método de Lowry et al (1951), utilizando seroalbúmina de bovino
como patrón.

ELECTROFORESIS EN GELES DE POLIACRILAMIDA

Las separaciones electroforéticas se realizaron en geles cilíndricos
de poliacrilamida al 7%, 0% y con una intensidad de corriente de 4 mA
por tubo, según la técnica descrita por Davies, (1964).

TINCION DE ISOENZIMAS

Las tinciones histoquímicas de lactato deshidrogenasa se reali-
zaron según Siciliano, (1968); incubando los geles por 10 minutos a ADE

posteriormente se hicieron perfiles densitográficos en un densitómetro
ORTEC Modelo 4310.

RESULTADOS Y DISCUSION

ACTIVIDADES DE LACTATO DESHIDROGENASA ALMACENADAS Á
DISTINTAS TEMPERATURAS

En general, se observa una tendencia a perder actividad a medida
que transcurre el tiempo de almacenamiento a las distintas temperaturas
a excepción de los homogenizados conservados a —180%GC, condición que
mantiene la actividad inicial aún después de 16 días de almacenamiento.
A49C es la temperatura a la cual los homogenizados presentan una menor
estabilidad lo que se refleja en una pérdida más acentuada de la actividad
enzimática (Fig. 1).

En la figura 2 se observa que la concentración de proteínas más
adecuada a cargar sobre los geles se encuentra en el rango de 25 a 50 ug.
En esta zona de concentración, la separación, resolución y nitidez de las
diferentes isoenzimas de LDH es la más adecuada para su posterior aná-
lisis.

En la Tabla 1 se señala la movilidad relativa de cada una de las
isoenzimas de LDH; los valores corresponden a los promedios obtenidos
de 21 corridas electroforéticas. La pequeña desviación standard (DS) obser-
vada indica que los geles de poliacrilamida resuelven estas isoenzimas
de una manera más clara y constante que los geles de almidón.

La Fig. 3 muestra las zonas de tinción de las isoenzimas de LDH
que se obtienen después que las muestras de homogenizados de cerebro
de A. olivaceus han sido almacenadas a las temperaturas y tiempos men-
cionados en materiales y métodos.

A (Dos días de almacenamiento): No se aprecian diferencias significativas
entre los homogenizados conservados a las distintas temperaturas, situación
que concuerda con las medidas de actividad enzimática de la Fig. 1.

B_ (Ocho días de almacenamiento): T,, no presenta variaciones aprecia-
bles en las zonas de actividad enzimática, si se compara con el almacena-
miento de dos días.

150 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

T5
100 A
Actividad
residual.
(90)
60
T
1
40 T,
eo coges gos bal Ber
2 6 10 pa
Tiempo (dias)

Fig. 1.- Actividades de lactato deshidrogenasa de A. olivaceus almacenadas a distintas
temperaturas, T, — T,: + 40C, 00C, -40C, -300C, y -1800C, medidas a distintos tiempos
de almacenamiento.

T,, la actividad relativa de A¿, A¿Bz y AB; han dismunuido res-
pecto de A¿B y Bo.

Ts, A.B2z y AB; han disminuido notablemente sus actividades
siendo menos afectadas A, y A¿B; B. mantiene su actividad inicial.

T,, A, ha desaparecido totalmente, A¿B mantiene muy escasa acti-
vidad lo que contrasta notoriamente con las tres isoenzimas restantes,
las cuales mantienen su actividad inicial.

C- (Dieciséis dias de almacenamiento): “T,, se detectan zonas de tinción
con una intensidad similar a las observadas en dos días de almacenamiento

para A¿B y B,, disminuciones de la actividad se observan para A.,, AB,
y AB.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 151

Fig. 2.- Separación electroforética de las isoenzimas de lactato deshidrogenasa de mace-
rados de cerebro de 4. olivaceus, en geles cilíndricos de poliacrilamida al 7% — 6:
10, 25, 50, 75, 100 y 150 ug. de proteínas cargadas sobre cada gel.

Fig. 3.- Separación electroforética de las isoenzimas de LDH de macerados de cerebro
de 4. olivaceus en geles de poliacrilamida al 7% almacenados a distintas temperaturas,
T, - T,: + 49€, 09C, -40C, -300C, —1800C. A, B y C: 2,8 y 16 días. Los geles fueron

cargados con 50 ug. de proteínas.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

T,, las zonas de tinción son similares a las abservadas en T..

T,, A, ha disminuido su actividad; A.B, 9,B, y AB, presentan
zonas de actividad muy tenues; B, no ha sufrido alteraciones.

T,, A, y A¿B han desaparecido totalmente; AB, mantiene una
muy escasa actividad; AB, y B, mantienen su actividad inicial.

T., las zonas de actividad enzimática no han experimentado va-
riaciones respecto de los tiempos iniciales de medición de la actividad de
las isoenzimas de LDH.

A

INV

1.2.3.819

345

12345

Fig. 4.- Densitogramas de isoenzimas de LDH de macerados de cerebro de A: olivaceus
mantenidos a distintas temperaturas y por tiempos variables de conservación.

O días
UI 4 días
CtunaloS: 16 días
Dee 8 días
IRON 16 días
Ia 16 días

almacenamiento
almacenamiento
almacenamiento
almacenamiento
almacenamiento
almacenamiento

UU 0,NyN-=

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 153

En la Fig. 4 se observan densitogramas de algunos de los geles
presentados en la Fig. 3. Los resultados grafican lo que se observa por
simple análisis visual de la Fig. 3, vemos, por ejemplo, que el densito-
grama E indica la pérdida de las actividades enzimáticas de A, y A¿B y la
disminución en AB, coincidiendo con los resultados analizados en la
Me OS Te

La caída de actividad de los macerados almacenados por tiempo
prolongado (Fig. 1), explican la desaparición de las actividades relativas
de las bandas de isoenzimas de LDH. Esto permite establecer las condicio-
nes más apropiadas de almacenamiento y de este modo corregir posibles
errores de interpretación derivados de mal manejo de las muestras que
deben ser sometidas a análisis electroforéticos.

TABLA 1
Movilidades relativas para las isoenzimas de lactato deshidrogenasa de macerados de cere-

bro de A. olivaceus en geles cilíndricos de poliacrilamida al 7%. Los valores corresponden
a promedios obtenidos de 21 corridas electroforéticas.

Isoenzima Movilidad Relativa
DS
B, 0.358 + 0.022
AB, 0.297 == 0.021
A,B, 0.233 += 0.014
A,¿B 0.166 += 0.013
A, 0.101 += 0.008

CONCEUSIONES

A partir de los resultados expuestos podemos extraer las siguientes
conclusiones para macerados de cerebro de A. olivaceus:

l. Es posible utilizar geles de poliacrilamida como matrices alternativas
a los geles de almidón en las separaciones electroforéticas de las iso-

enzimas, puesto que presentan una alta repetitividad (movilidades
relativas con baja DS).

2. Cada sistema de isoenzimas a analizar debiera someterse a un control
previo de esta naturaleza. La recomendación es válida principalmente
para aquellos laboratorios que procesan grandes cantidades de muestras,

muchas de las cuales soportan condiciones de almacenamiento por
largos períodos de tiempo.

3. Las mejores condiciones de almacenamiento para las isoenzimas de
lactato deshidrogenasa de macerados de cerebro de A. olivaceus corres-
ponden a una temperatura de -180%C, a la cual no se registran cam-
bios en la actividad total de los homogenizados ni de las isoenzimas
en particular aún después de 16 días de conservación. (Fig. 1, 3 y 4).

154 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo fue financiado por la Dirección de Investigación de
la Universidad de Concepción a través de los Proyectos de Investigación
02.08.99 y 20.31.07.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 155 - 160, 1984. 155

TECNICA EXPERIMENTAL PARA REALIZAR BIOENSAYOS
TOXICOLOGICOS CON ANIMALES ACUATICOS*

Experimental technique for aquatic animals toxicological bioassays.

JUAN F. GAVILAN E.** e IVONNE HERMOSILLA B.**

RESUMEN
Se presenta un sistema de cultivo para animales acuáticos que permite estan-
darizar estudios toxicológicos en condiciones de laboratorio. El sistema se puede man-
tener experimentalmente por períodos de tiempo cortos o prolongados y replicar
simultáneamente tantas veces como sea necesario.

ABSTRACT
A culture system for aquatic animals allowing the standardization of. toxi-
cological studies under laboratory conditions is presented. This system can be expe-

rimentally maintained for long or short peniods of time and simultaneously replicated
as many times as necessary.

Keywords: Technique. Toxicology. Bioassays. Aquatic Animals.

INTRODUCCION

En estos últimos años se han incrementado los estudios de conta-
minación ambiental para conocer la toxicidad y los efectos teratológicos
de algunos compuestos químicos, ajenos al ambiente, pero incorporados
a él debido al desarrollo industrial y al extraordinario uso de compuestos
químicos en la agricultura moderna.

La alteración en el ambiente más allá del nivel de tolerancia y
la capacidad regulativa de la naturaleza preocupa a muchos investigadores,
los cuales han volcado sus esfuerzos para realizar estudios sobre toxicidad
especialmente de pesticidas (Biagianti y Brusle, 1983).

*Proyecto 20.31.03. Dirección de Investigación, Universidad de Concepción.
**Laboratorio de Biología del Desarrollo. Depto. de Biología Molecular. Facultad de Ciencias Biológicas

y de Recursos Naturales. Casilla 2407, Apartado 10, Concepción, Chile.

156 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

En bioensayos de contaminación acuática es común detectar el
uso de determinados organismos que ofrecen ventajas para su manejo en
condiciones de laboratorio, entre ellos los estados embrionarios y/o larvales
están mereciendo un buen sitio como substrato óptimo de estos estudios.
Sin embargo, existe la inquietud de que muchas especies que no son
objeto de investigación puedan también estar en peligro a causa de la
contaminación ambiental.

Esta situación ha demandado estandarizar una técnica adecuada
en primer lugar para mantener a los organismos que preocupan en condi-
ciones de laboratorio (Nace, 1968), y en segundo lugar para someter a éstos
a soluciones test. Al respecto, respondiendo a esta necesidad, en el presente
trabajo se define una metodología para bioensayos de contaminación
utilizando estados embrionarios y larvales de anfibios.

METODOLOGIA Y RESULTADOS

La técnica se ensayó utilizando posturas y estados larvales (rena-
cuajos) de la “rana chilena”, Caudiverbera caudiverbera (Linné, 1758).
Los estados embrionales fueron definidos según la tabla de Jorquera e
Izquierdo (1964) para la rana chilena y los estados larvales según Etkin
(1964) para los anuros en general.

Botellas plásticas desechables de dos litros de capacidad en forma
invertida, sirvieron de unidades de cultivos (Fig. 1.A y 1.B). La base de la
botella fue abierta y el cuello sellado desde el interior con un tapón de
goma a través del cual se hizo pasar un tubo nivelador de vidrio de 0,6
cm de diámetro y de 20 cm de longitud, el que tiene como función man-
tener el volumen constante en la botella. Un tubo de plástico de 1,8 cm
de diámetro y de 14 cm de longitud, con la capacidad suficiente para
dejar en su interior el tubo nivelador, funciona como sifón (Fig. 1.A).
La base de este tubo provista de ranuras se apoya sobre el tapón de goma,
estas ranuras del sifón permiten la expulsión de desechos sólidos cuando
éstos se acumulan en el cuello de la botella.

En caso de que la acumulación sea significativa, será necesario
que el tubo sifón se tape en su extremo superior para producir un rápido
sifonaje permitiendo un recambio parcial o completo de agua.

Entre la zona media y el fondo de la botella se coloca una malla
circular de plástico reforzada en su perímetro con anillos de goma. Esta
debe presentar perforaciones menores al tamaño del material biológico
en ensayo (Fig. 1.A y 1.B). Para su instalación se baja a lo largo del tubo
sifón. La función de la malla es definir dos compartimentos en el depó-
sito, por ello el diámetro de la malla debe ser similar al diámetro interno
del depósito permitiendo que en los bioensayos con embriones, éstos pue-
den mantenerse suspendidos entre aguas y en los bioensayos con estados
larvales se favorezca la separación de los desechos y desperdicios sólidos
que tienden a acumularse en el fondo de la botella (Fig. 1.B).

Las unidades de cultivo se pueden suspender en soportes metálicos
o repisas de madera (Fig. 1.B y Fig. 2). Instaladas las unidades de cultivo
con el volumen de agua o solución test a usar, se debe considerar la aera-
ción del sistema. Para ello será necesario contar con un aerador eléctrico
(Jewell 110 V AC. 6 Watt), el cual proporciona el aire que sale a través

Bol. Soc: Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984. 157

de dos mangueras plásticas de 5 mm de diámetro (Fig. 2). Con el objeto
de hacer llegara cada unidad de cultivo una presión de aire constante,
una de las mangueras se conecta a una columna de agua de volumen va-
riable, que consiste en un tubo de vidrio de 3,5 cm de diámetro (Fig. 2).
La otra rama del aerador proporciona el aire a cada una de las unidades
de cultivo. Para ello, se conectan mangueras plásticas de 1,5 mm de diá-
metro, utilizando agujas desechables de uso clínico (Fig. 1.B y 2).

En el caso de los bioensayos, en los que se emplean estados lar-
vales, es necesario un recambio contínuo de agua. La continuidad se
asegura manteniendo el sifón abierto y suministrando agua a cada una
de las unidades de cultivo por simple goteo a la superficie. Tal suministro
se consigue instalando una red de mangueras, semejante a las utilizadas
en el sistema de aeración que se conectan a la fuente de agua o solución
test que deberá ser colocada por sobre el nivel en el que se encuentren
instaladas las unidades de cultivo (Fig. 2). El exceso de agua se elimina
pasivamente desde la botella a través del tubo nivelador que se conecta
a mangueras de desagiie de longitud variable. (Fig. 1.A).

Fig. 1.A.- Elementos de la Unidad de Cultivo: Botella plástica (b) cuyo cuello es cerrado
con un tapón de goma (t), provista de un tubo nivelador de vidrio (tn), un tubo sifón
de plástico (ts) y una malla circular (m). En el extremo externo del tubo nivelador se
adosa una manguera de desagúe (md).

Fig. 1.B.- Unidad de Cultivo instalada sobre soporte metálico (s), conectada a red de
mangueras de aire (mr) y agua (mg). Nivel del agua (nv).

158 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Fig. 2.- Disposición de varias Unidades de Cultivo (UC) conectadas al sistema de aera-
ción: (AR) aerador y (C) columma de regulación. Depósito (DP) de agua y/o solución
test.

DISCUSION

La presente metodología describe un sistema de cultivo diseñado
para ser utilizado en bioensayos con organismos acuáticos, especialmente
anfibios y peces. Para ello se utilizan unidades de cultivo en las cuales
es posible mantener cierta constancia en la relación volumen/número de
organismos. El volumen que se determinó como óptimo en estas unidades
es de 1 litro y en razón a este volumen se puede fijar el número de orga-
nismos por unidades de cultivo. Si bien es cierto que esto conlleva utilizar
un número relativamente bajo de huevos o larvas, las características de
bajo costo y fácil confección de los materiales empleados en el sistema
permite establecer réplicas tantas veces como lo requiera un análisis esta-
dístico confiable. Por otro lado, es necesario enfatizar que el bajo número
de embriones por unidad de cultivo, permite un mejor manejo y control de
las experiencias sin someter a los organismos a situaciones de stress, con-
diciones que deben ser consideradas seriamente en la discusión de resul-
tados que valoran parámetros ajenos al ambiente normal del animal, sobre
todo, en organismos con alta motilidad (Wedemeyer, 1970).

Las características del sistema descrito en el presente trabajo,
como el recambio de agua, sumistro de aire, compartamentalización de
las botellas y, cuando sea necesario alimentación, permite el análisis del
bioensayo durante un período de tiempo que puede comprender horas o
semanas. Al revisar la bibliografía se puede establecer que los bioensayos

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 159

tienen una duración variable dependiendo ello del diseño experimental.
Al trabajar con sistemas acuáticos es primordial mantener a éste en buenas
condiciones por lo que se requiere un recambio contínuo de agua o solu-
ción test, prescindiendo de este recambio en aquellas experiencias en que
exista aeración constante. (Laughlind y Linden, 1982).

Comúnmente, los autores optan por efectuar una trasvasijación
de las soluciones, 1 a 2 veces por semana (Marchal — Segaultand y Ramade,
1981; Muramoto, 1981), especialmente cuando se trabaja con estados lar-
vales. Nuestro sistema presenta la ventaja de renovar el agua y aire pasi-
vamente por autocontrol sistemático, descartando, a su vez, cualquier posi-
bilidad de stress a los organismos. Situación esta última que no se consi-
dera en la bibliografía y que tendría importancia en respuestas fisiológicas.

Como las experiencias realizadas para probar la metodología no
se han limitado a bioensayos de corta duración sino que a través de varias
etapas del desarrollo de anfibios, el sistema ofrece garantía para mantener
los estados larvales en buenas condiciones al suministrar el alimento ade-
cuado. Este suministro puede ser realizado a diario (Elliot — Feeley y
Armstrong, 1982), sin embargo, debería respetarse un horario preestable-
cido evitando así nuevas condiciones de stress.

AGRADECIMIENTOS

Los autores expresan su reconocimiento a la Dirección de Inves-
tigación de la Universidad de Concepción, por su apoyo a través del Pro-
yecto 20.31.03 y al Prof. Hugo 1. Moyano del Depto. de Zoología de la
Universidad de Concepción, por su colaboración.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 161-164, 1984. 161

HELMINTOS PARASITOS DE FELIS
GUIGNA MOLINA, 1782
(CARNIVORA, FELIDAE)

Parasitic Helminths of Felis guigna
Molina, 1782

Jacqueline Fernández B.* y
César Villalba S.*

,
RESUMEN

Se dan a conocer los helmintos pará-
sitos encontrados en un ejemplar de
Felis guigna Molina, 1782 capturado en
Chaimávida (36950'S; 73003'0), Chile.
Los parásitos fueron identificados como
Uncinaria stenocephala y Toxocara cati
(Nematoda); Taenta taeniformis, Sptiro-
metra mansonoides y Taenia sp. (escó-
lices) (Cestoda). De estos, los tres pri-
meros constituyen el primer registro
para este hospedador en Chile.

ABSTRACT

Helminth parasites found in a single
specimen of Felis guigna Molina, 1782
captured in Chaimávida (36050'S; 730
03'W), Chile, are reported. The worms
are: Uncinaria stenocephala and Toxo-
cara cati (Nematoda); Taenia taenifor-
mis, Spirometra mansonoides and sco-
lex of Taenia sp. (Cestoda). The first
three are recorded in this host for the
first time in Chile.

Keywords: Parasitic helminths,
Carnivora, Chile, Neotropics.

INTRODUCCION

En Chile, los estudios parasitológicos
referidos a animales terrestres, han au-
mentado considerablemente en los últi-
mos años, pero han sido orientados prin-
cipalmente a animales domésticos o a
aquellos asociados estrechamente con el
hombre (Tagle, 1970).

Las investigaciones sobre parásitos que
afectan a especies salvajes o no domésti-
cas se han dirigido, en su mayoría, a roe-
dores, destacándose los estudios sobre
triquinosis de Poupin (1879); Wilhelm
y Ruiz del Río (1938): Neghme et al.
(1948); Alba y Jarpa (1951); Alvarez et
al. (1970) y Rojas et al. (1971).

Hacen excepción estudios más gene-
rales, como los de Alvarez (1963) sobre
Echinococcosis silvestre en Chile; de
Cattan (1974) sobre los helmintos gas-
trointestinales de Oryctolagus cuniculus;
de Torres et al. (1976) sobre los nemá-
todos de Rattus norvegicus y Ctenomis
maulinus; de Babero y Cattan (1975) y
Cattan et al. (1976) sobre los parásitos
de Octodon degus y sus variaciones esta-
cionales; de Díaz et al. (1977) sobre los
parásitos de cérvidos autóctonos y exó-
ticos en el sur de Chile y el trabajo de
Babero et al. (1979) sobre los parásitos
del coipo, Myocastor coypus. A éstos es
necesario agregar una larga serie de co-
municaciones sobre la presencia de cier-
tos parásitos aislados en diferentes roe-
dores y otros mamíferos relacionados (Ba-
bero y Cattan, 1980).

Los únicos antecedentes existentes so-
bre parásitos de Felis guigna son los de

*Depto. Zoología, Fac. Cs. Biol. y Rec. Nat., Universidad de Concepción, Casilla 2407. Concepción, Chile.

162 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Wolfíhugel (1949); Alvarez (1963) y Al-
varez et al. (1970). Los dos últimos en
busca de Echinococcus sp. y Trichinella
spiralis respectivamente, resultando am-
bos negativos, y el primero que señala
la presencia de Diphyllobothrium (Spi-
rometra) decipiens conocida actualmente
como Spirometra mansonoides.

En el presente trabajo se dan a cono-
cer los helmintos encontrados en el apa-
rato digestivo de un ejemplar de Felis
guigna, capturado en Chaimávida (VIII

TABLA

Región) en Septiembre de 1982, el cual
se encuentra depositado en el Museo
Zoológico de la Universidad de Concep-
ción (MZUC N9 7615), al igual que los
parásitos encontrados (MZUC N9 5077,
5078, 5079, 5080 y 5081).

RESULTADOS Y DISCUSION

Los helmintos y sus cantidades se se-
ñalan en la Tabla 1.

1

Helmintos encontrados en un ejemplar de Felis guigna Molina, 1782, capturado en
Chaimávida (VIII Región), Chile.

Nematoda
Toxocara cati
Uncinaria stenocephala
Cestoda
Spirometra mansonoides
Taenia taeniformis
Taenia sp. (escólices)

TOTAL MACHOS HEMBRAS
36 9 27
279 120 159
5
12
4

Uncinaria stenocephala (Fig. 1-3) pre-
senta una distribución cosmopolita, ha-
biéndose encontrado en cánidos, félidos
y algunos otros mamiferos (Yamaguti,
1959). En Chile fue encontrada por pri-
mera vez en perros de la ciudad de San-
tiago (Alcaíno y Huerta, 1970). Poste-
riormente ha sido señalada por Torres
et al. (1974) y Torres et al. (1980) en pe-
rros de Valdivia y Calafquén, respecti-
vamente.

Toxocara cati (Figs. 4, 5) al igual que
U. stenocephala, presenta una distribu-
ción cosmopolita, parasitando a dife-
rentes carnívoros, en su mayoría félidos
(Yamaguti, 1959). En Chile han sido se-
ñalada como parásito del gato doméstico
(Tagle, 1970) y de Felis concolor puma
(Torres et al., 1972), con lo cual se puede
considerar a este último y a Felis guigna
como reservorios naturales de T. cati.
Es importante señalar que T. cati al
igual que T. canis, tiene importancia en
salud pública, por cuanto en humanos
pueden desarrollar el cuadro de larva

migrans visceral (Beaver, 1969; Tagle,
1970; Muñoz et al., 1983).

Taenia taeniformis (Figs. 6, 7) ha sido
señalada en Chile solamente como pará-
sito del gato doméstico (Tagle, 1970;
Torres et al., 1972), aunque a nivel mun-
dial parasita a otros félidos silvestres
(Yamaguti, 1959). Su estado larval, Cys-
tecercus fasciolaris, se encuentra en ratas
comunes y silvestres, lo que nos puede
indicar los posibles hábitos alimentarios
de F. guigna.

La presencia de Spirometra mansonoi-
des (Fig. 8) en F. guigna constituye el
segundo registro del parásito tanto para
Chile como para la especie hospedadora.
Anteriormente fue señalada por Wolff-
hugel (1949) parasitando en estado lar-
val y adulto a algunos félidos, cánidos,
mustélidos, roedores y Salmo irideus en
la región valdiviana.

Barriga y Jaramillo (1966); Torres et
al. (1972) y Torres et al. (1974) señalan
la presencia de Spirometra sp. como pa-
rásito de perros y gatos domésticos. Re-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 163

cientemente, Torres y Figueroa (1982)
identifican a Spirometra mansoni como
parásito de gatos de la ciudad del Val-
divia.

Es interesante destacar la coexistencia
de S. mansonoides y Taenia taeniformis
en F. guigna, ya que Miiller (1974) se-
ñala que en gatos, la infección inicial
por T. taeniformis provoca inmunidad
contra una infección secundaria por Spi.
rometra sp.

El hallazgo de estos parásitos, T. cati,
U. stenocephala, S. mansonoides, T. tae-
niformis y Taenia sp. reviste importancia
tanto ecológica como médica, debido a
que Felis guigna constituiría un reser-
torio natural de ellos y un camino más
para precisar sus posibles ciclos biológi-
cos y evolutivos.

AGRADECIMIENTOS

Se agradece al Profesor Dr. Jorge N.
Artigas por facilitar el ejemplar de Felis
guigna y al Profesor Hugo I. Moyano

por el apoyo y revisión crítica del ma-
nuscrito.

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Figs. 1-3: Uncinaria stenocephala. Fig. 1.- Extremo anterior; Fig. 2.- Bursa copulatriz;
Fig. 3.- Rayo dorsal de la bursa; Figs. 4-5.- Toxocara cati; Fig. 4.- Extremo anterior;
Fig. 5.- Extremo posterior y espículas; Figs. 6-7.- Ganchos del rostelo de Taenia taeni-
formis; Fig. 8.- Proglótida madura de Spirometra mansonoides.

bre

Vorrát, -

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PAN

MS AU

109 sed

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 50) pp. 165-166, 1984, 165

NUEVO REGISTRO DE GALEICH-

THYS PERUVIANUS LUTKEN, 1874

(PISCES: SILURIFORMES: ARIIDAE)
PARA CHILE

A new Chilean record of Galeichthys
peruvianus Lútken, 1874 (Pisces,
Siluriformes, Ariidae).

Víctor H. Ruiz R.*
César Villalba S.*

RESUMEN
Se da a conocer el hallazgo de un ejem-
plar de Galeichthys peruvianus Lútken,
1874 frente a Cocholgie (36935'S; 730
00'W), Chile, aumentando su distribu-
ción geográfica en más de 16% de latitud
hacia el sur.

ABSTRACT
The finding of one specimen of Ga-
leichthys pPeruvianus Liitken, 1874 in
Cocholgúe (36935'S; 73000'W) Chile is
reported, Its geographical distribution is
therefore enlarged in 169 latitude south-
ward.

Keywords: Pisces, Siluriformes, Ariidae.
Geographical distribution, South-—Eastern
Pacific.

Los únicos antecedentes sobre la pre-
sencia de Galeichihys peruvianus en
Chile son los entregados por Bahamonde

y Pequeño (1975) al incluirlo en su lista
sistemática de peces chilenos, y Fuentes
(1981) en el que amplía su distribución
geográfica desde llo (Perú) hasta los
20013'S, Iquique (Chile), entregando
además una descripción y valores morfo-
métricos del ejemplar estudiado.

En Agosto, 14 de 1983 durante faenas
de pesca artesanal frente a Cocholgúe,
fue capturado un especimen de “bagre
marino” que al ser estudiado posterior-
mente fue determinado como: Galeich-
thys peruvianus Lútken, 1874 (Chiri-
chigno, 1974; Hildebrand, 1946). Con
esta captura se amplía su distribución
geográfica desde Iquique hasta Cochol-
gúe (36035'S; 73000"W) Chile; de modo
que su rango distribucional abarca en-
tonces desde Altata, Sinaloa (México)
hasta Cocholgúe (Chile).

Los caracteres morfométricos del ejem-
plar estudiado se entregan en la Tabla
N0 1.

Los caracteres biométricos del ejem-
plar estudiado concuerdan con los de
Fuentes (1981), con pequeñas variaciones
en lo referente a altura máxima del
cuerpo en longitud estándar (0,57 veces
más que el ejemplar estudiado) y diá-
metro orbital en longitud de la cabeza
(1,20. veces más que el ejemplar estu-
diado por Fuentes, 1981). “Todas ellas
esperables como producto de variación
individual.

*Universidad de Concepción, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales. Departamento de

Zoología, Casilla 2407-10, Concepción, Chile.

166 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

TABLA

1

Caracteres morfométricos del ejemplar estudiado

Caracteres morfométricos en mm.:

Longitud total 375

Longitud estándar 296
Longitud de la cabeza 85
Ancho de la cabeza 65
Ancho del cuerpo 57
Apertura bucal 40
Altura de la cabeza 48
Altura máxima 65
Distancia preorbital 32
Distancia interorbital 39
Long. tentáculos mandibulares

anteriores 31

Diámetro orbitario 11

Longitud preanal 178
Longitud predorsal 105
Altura del pedúnculo 21
Altura máxima de la dorsal 59
Long. de la aleta pectoral 62
Long. de la espina dorsal 53
Long. de la espina pectoral 59
Long. tentáculos maxilares 56
Distancia postorbital 41
Long. tentáculos mandibulares

posteriores 46

Como este bagre es característico de
aguas cálidas cercanas al Ecuador (Ni-
chols y Murphy, 1922) (Fide: Fuentes,
1981) su presencia en la zona podría

BIBLIOGRAFIA

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aguas temperado-cálidas desde el norte,
o a una distribución ecológica más am-
plia que la hasta ahora citada.

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en Chile: Galeichthys peruvianus
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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, pp. 167 - 170, 1984.

UN PEZ POCO CONOCIDO EN

CHILE: EMMELICHTHYS CYANES-
CENS (GUICHENOT, 1848). (PERCI-
FORMES: EMMELICHTHYIDAE)

Emmelichthys cyanescens (Guichenot,
1848) a poorly known fish from Chile.
(Perciformes, Enmmelichthyidae).

Emilio Alveal R.*?
Victor H. Ruiz R.**

RESUMEN
Se entregan nuevos antecedentes sobre
Emmelichthys cyanescens . (Guichenot,
1848) y se describe un ejemplar reco-
lectado frente a la desembocadura del
río Bío-Bío ca. (36949'S; 73012"W), au-
mentando su rango de distribución geo-
gráfica desde Valparaíso hasta la desem-

bocadura del río Bío - Bío.

ABSTRACT

New data on the distribution and ta-
xonomic characteristics based on one
specimen of Emmelichthys cyanescens
(Guichenot, 1848), collected in front of
Bío-Bio river mouth ca. 36049'S;
73012'W) are here reported. This ex-
tends its distribution from Valparaiso
to Bio-Bio river mouth.

Keywords: Pisces, Perciformes,
Emmelichthyidae.

167

INTRODUCCION

La familia Emmelichthyidae según
Nelson (1976), está dividida en dos sub-
familias: Centracanthyinae (Maenidae) y
Emmelichthyinae; esta última con cinco
géneros de los cuales Emmelichthys está
representado en la fauna íctica chilena
con la especie Emmelichthys cyanescens
(Guichenot, 1848). Esta especie fue des-
crita por Guichenot (1848) como Boxao-
don cyanescens sobre la base de un ejem-
plar capturado en Valparaíso. Delfin
(1901) y Fowler (1945) señalan a Emme-
lichthys cyanescens refiriéndose siempre
al ejemplar capturado en Valparaíso.

Este trabajo tiene por objeto entregar
algunos antecedentes sobre esta especie
poco conocida para aguas chilenas.

Familia EMMELICHTHYIDAE

Emmelichihys cyanescens
(Guichenot, 1848)

Boxaodon cyanescens Guichenot, In Gay,
1848. Zoología 1I Pisces: 209-211.

Erythrichthys cyanescens Giinther (1859):
395; Jordan and Fesler 1889-1891
(1893): 528; Delfin (1898): 150,

Emmelichthys cyanescens Delfin (1901):
70; Fowler (1923), 12(100): 345, Chi-
le, Valparaíso.

*Pontificia Universidad Católica de Chile, Sede Regional Talcahuano. Depto. Biología y Tecnología del
Mar. Laboratorio de Zoología. Casilla 127, Talcahuano, Chile.

»*Universidad de Concepción. Fac. de Ciencias Biol. y de Recursos Nat. Depto. Zoología, Casilla 2407-10.

Concepción, Chile.

168 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

MATERIAL ESTUDIADO:

Un ejemplar capturado con red de
cerco frente a la desembocadura del río
Bío - Bio ca. (36049'S; 73012"W), este
ejemplar se encuentra depositado en el
Museo de Zoología de la Universidad de
Concepción (MZUC) con el NO 16401.
En el estudio de los caracteres morfomé.-
tricos del ejemplar se siguió a Hubbs y
Lagler (1958). (Tablas NO 1 y 2).

DESCRIPCION GENERAL:

(Fig. 1). Cuerpo alargado, fusiforme,
levemente comprimido hacia la región
caudal, con pequeñas escamas ctenoídeas
que invaden el maxilar, preopérculo y
opérculo; no se encuentran en las aletas,
en la boca, mandíbulas ni rayos bran-
quiostegos. Dos aletas dorsales separadas,
la pnimera casi triangular se inserta
frente a la pectoral, la segunda dorsal
es casi tan larga como la primera. Entre
ambas aletas se disponen cinco espinas
libres, puntiagudas y dirigidas hacia
atrás; éstas y la segunda dorsal se replie-
gan en un surco dorsal. Las pectorales
son alargadas 5,86%, en la longitud es-
tándar. La anal más larga que la segunda
dorsal lleva tres espinas y ocho rayos
blandos, generalmente se presenta re-
plegada en un surco anal. Las ventrales
son pequeñas con una escama entre ellas

y una escama axilar a cada lado del
rayo externo dejando el área postero-
basal de las aletas en una especie de
surco. Caudal levemente furcada. Cabeza
grande, más larga que alta, boca peque-
ña, protráctil; el maxilar alcanza el bor-
de anterior del ojo. Ojos grandes, dis-
tancia interorbital casi tan grande como
el diámetro del ojo. No hay dientes en
las mandíbulas ni en el vómer. Orificios
nasales juntos, más cerca del borde ante-
rior de la órbita que del extremo de la
boca. Línea lateral más o menos recta.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

La familia Emmelichthydae se distri-
buye en el Atlántico, Indico y Pacífico
Sur (Nelson, 1976). La subfamilia Cen-
tracanthinae con nueve géneros se dis-
tribuye en el Mediterráneo, Atlántico
del Este e Indico. Mientras Emmelich-
thyinae tiene una distribución Indopací-
fica, Pacifico Sur, Atlántico del Este y
Mar del Caribe.

La especie Emmelichthys cyanescens
(Guichenot, 1848) se encuentra en Val-
paraíso (ín Gay, 1848; Delfín, 1901;
Fowler, 1933 y 1945). Mann (1954) da
como distribución para el país “Costa
Central”.

Con este trabajo se amplía su distribu-
ción geográfica desde Valparaiso hasta
Bahía de Concepción (36949'S; 73012"W).

Fig. 1.- Emmelichthys cyanescens.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 169

TABLA I

Caracteres biométricos del ejemplar de Emmelichtys cyanescens (Guichenot, 1848).

Caracteres morfométricos (mm)
Longitud total 252,7
Longitud estándar | 214,6
Altura del cuerpo 41,8
Ancho del cuerpo 31,5
Longitud de la cabeza 58,3
Longitud de la aleta pectoral 43,1
Longitud de la aleta pélvica 29,8
Longitud entre dorsal anterior y posterior 41,1
Longitud predorsal 77,2
Longitud preanal 151,8
Longitud prepélvica 717,4
Base aleta pectoral 10,3
Base aleta pélvica 6,1
Base aleta anal 25,1
Base aleta dorsal anterior 30,3
Base aleta dorsal posterior 23,2
Diámetro orbital 13,1
Longitud interorbital 15,0
Longitud preorbital 14,7
Altura del pedúnculo caudal 13,4

TABLA Il

Comparación de los caracteres merísticos entre el ejemplar de este trabajo
y los dados por Guichenot, 1848.

Caracteres merísticos MZUC 16401 Guichenot, 1848
A A A A E PENE o a

Aleta dorsal anterior VII VIINM

Aleta dorsal posterior 10 10

Entre ambas aletas dorsales vV v

Aleta pectoral 2 16

Aleta pélvica L 5 1

Aleta anal III, 8 II, 12

Poros de la línea lateral 109 =——

Branquiostegales 7 U

Branquispinas rama superior 12 ===

Branquispinas rama inferior 28 -=—

Branquispinas totales 40 =——

¿qE_-- IA AAA

170 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

DISCUSION

El ejemplar de este estudio es de ma-
yor tamaño (252,7 mm) que el reportado
anteriormente para Valparaiso (33002'S;
71937'W) que tiene una longitud de 127
mm (Guichenot, 1848).

Al comparar algunos caracteres merís-
ticos con el ejemplar de Guichenot
(1848) estos no coinciden, así encontra-
mos 21 rayos en la pectoral en oposición
a los 16 que se mencionan en la descrip-
ción original (Tabla 11). Es necesario
notar que Guichenot (1848) menciona
dos espinas en la anal, sin embargo, en
el esquema del Atlas dibuja tres, coinci-
diendo con lo observado en el ejemplar
estudiado. Con este registro se amplía
la distribución de Emmelichthys cyanes-
cens (Guichenot) hasta la desembocadura
del río Bío - Bío.

Todos los autores lo citan para el área
de Valparaíso, pero al parecer todos
sin excepción, haciendo referencia al es-
pecimen capturado por Gay y señalado
por Guichenot (1848); sólo Mann, (1954)
señala “Costa Central”, lo que hace muy
probable que éste sea el segundo regis-
tro de esta especie.

BIBLIOGRAFIA

Bahamonde, N. y G. Pequeño. 1975. Pe-
ces de Chile. Lista sistemática. Mus.
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Guichenot, A. 1848. In Gay, Historia Fí-
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Giúnther, A. 1859-70. Catalogue of the
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Nelson, J. S. 1976. Fishes of the World.
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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 171 - 174, 1984, 171

SOBRE PHYSALIA PHYSALIS
(LINNE, 1758) Y VELELLA SPIRANS
FORSKAL, 1775, PROVENIENTES DE

LA X REGION DE CHILE
(CNIDARIA, HYDROZOA)

On Physalia physalis (Linné, 1758) and
Velella spirans Fórskal, 1775 from Tenth
Chilean Region (Cnidaria, Hydrozoa).

Hugo I. Moyano
Claudio Valdovinos*

RESUMEN

Se da a conocer el hallazgo de Phy-
salia physalis (Linné, 1758) (Cnidaria,
Hydrozoa, Siphonophora) y Velella spi-
rans Fórskal, 1775 (Cnidaria, Hydrozoa,
Chondrophora) en la X Región chilena.
Se incluyen breves descripciones, dibujos
y tabla de medidas.

ABSTRACT

The presence of Physalia physalis (Lin-
né, 1758) (Cnidaria, Hydrozoa, Siphono-
phora) and Velella spirans Fórskal, 1775
(Cnidaria, Hydrozoa, Chondrophora) in
the Chilean 10tk Region is reported.
Short descriptions, measurements, and
drawings are also included.

Keywords: Pelagic Hydrozoa. South
Eastern Pacific.

Aunque existen citas relativas a la
presencia de sifonóforos en aguas chi-
lenas, desde los tiempos del Abate Mo-
lina (1788), poco es lo que se ha hecho
en fijar lugares concretos, así como me-
didas de los ejemplares encontrados.

En las colecciones zoológicas de la
Universidad de Concepción se encuen-
tran algunos ejemplares de Ph. physalis
obtenidos por el primer autor en la Isla
de Pascua en 1972, así como consta el
haberse encontrado ejemplares frente a
la costa de Santiago en 1982 (Moyano,
comunicación personal), lo que estaría
indicando que esta especie no es rara,
tanto para la costa chilena como para
las islas oceánicas ubicadas frente a ella.
Previamente a lo citado, Fagetti (1958)
publica una nota sobre tres ejemplares
recolectados en Hanga—-Roa en Isla de
Pascua en 1957, señalando de paso que
se utiliza el nombre de Ph. physalis,
siguiendo a Moser (1925), quien reunió
a Ph. arethusa Brown y Ph. utriculus
Le Martinier bajo un solo nombre, el
de Ph. physalis (Linné).

En cuanto a Velella spirans, los auto-
res no han encontrado citas precedentes
para la costa chilena, con excepción a
un hallazgo en Isla de Pascua (Leloup,
1935).

El objetivo de la presente comunica-
ción es el de dar a conocer ejemplares
obtenidos en la costa sur de la provincia
de Valdivia, (y recolectados por el se-
gundo autor), arrastrados hasta allí pro-
bablemente, por los fuertes vientos del
SW prevalecientes en el verano en aque-
lla región.

“Departamento de Zoología. Universidad de Concepción, Casilla 2407. Concepción. Chile.

172 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Figs. 1, 1.- Physalia physalis. 1.- Vista dorso-lateral de una colonia completa; la vela
o cresta dorsal se aprecia en el lado izquierdo del flotador (Vd); 2.- Vista lateral de
un gonodendron; las esférulas más pequeñas corresponden a gonozooides masculinos
(Ma) y los levemente mayores piriformes a los femeninos (Fe).

Figs. 3, 4 y 5.- Velella spirans. 3.- Vista dorsal del flotador; las líneas concéntricas
cortadas diagonalmente por la vela (Vd), representan los límites de las cámaras aerí-
feras (Ca); 4.- Vista ventral; el polipo central (Pc) destaca en relación con los gono-
zooides provistos de yemas de las futuras melusas (Gz); marginalmente se ubican los

dactilozooides (Dc); 5.- Extremo terminal de un gonozooide con una yema avanzada
(Ya) de una futura medusa reproductora.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 173

Physalia physalis (Linné, 1758) (Figs. 1
y 2)

Durante los veranos de 1982, 1983
y 1984 se recolectaron respectivamente en
Hueicolla (40908'S; 73041'W) 49, 33 y
121 ejemplares. La muestra de 1982 fue
fijada en alcohol de poca graduación,
ca. 509 y las dos últimas en formalina
al 10%. En los tres casos, la mayoría
de los ejemplares fueron recogidos va-
rados en la playa, por lo cual muestran
deterioro y sedimento adherido a las
partes blandas. "Tomando en cuenta las
tres muestras en conjunto y midiendo
50 ejemplares, se aprecia un rango entre
6 mm y 37 mm en el diámetro mayor
del flotador, con un promedio de 13 mm
(ver Tabla I), estos valores son propor-
cionalmente menores a los dados por
Fagetti para los ejemplares de Isla de
Pascua (1958) y también menores que los
4 recolectados por el primer autor en
el mismo lugar en 1972, cuyos valores
alcanzan como máximo 47 mm en el
radio mayor del flotador.

Estructuralmente, los ejemplares exa-
minados concuerdan con la descripción
de Totton (1965). Se trata igualmente
de individuos en que a masa cormidial
se desarrolla preferentemente en el lado
derecho cuando se orienta el flotador
con su parte libre mirando hacia el ob-
servador. Sobre el tamaño de las diversas
estructuras es aventurado proponer va-
lores por la extrema contractibilidad de
las mismas, no obstante es posible se-
ñalar que las mayores estructuras corres-
ponden a gastrozooides y filamentos pes-
cadores (Tentáculos de “Totton, 1965).
Junto a los gastrozooides sobresalen
también los gonodendros que cuelgan de
derecha a izquierda de los gastrozooides
centrales.

Velella spirans Fórskal, 1775 (Figs. 3,
4 y 5)

Al igual que la especie anterior, V.
spirans fue recolectada en Hueicolla los
años 1982, 1983 y 1984, obteniéndose
1, 3 y 78 ejemplares respectivamente,
los que fueron fijados en formalina al

109%. Las medidas de 50 de los 82 ejem-
plares aparecen en la Tabla 1; indi-
cando que la mayor parte de ellos oscila
alrededor del centímetro y medio en su
radio máximo. Este valór es un poco
menor que el de 20 mm señalado por
Leloup (1935) para dos ejemplares reco-
gidos en Isla de Pascua. La estructura
general de los ejemplares estudiados con-
cuerda sensiblemente con lo que señala:
Hyman (1940: 479-481, figs. 155 c, d).
Aunque los ejemplares están algo dete-
riorados por su contacto y aplastamiento
contra la arena de la playa, es posible
distinguir claramente el gran pólipo
central, la serie concéntrica de pólipos
yemadores de medusas sexuadas y los
dactilozooides marginales. En algunos
ejemplares fue posible hallar yemas
muy avanzadas de las futuras medusas
sexuadas que medían entre 1.10 y 1.25
mm de diámetro.

TABLA I
Medidas de los flotadores de Velella
spirans y Physalia physalis provenientes
de Hueicolla (X Región) e Isla de
Pascua.

Velella spirans

Hueicolla

Xx s Máx. Min. n

Largo IIS ESA SO
Ancho MANO A OO

Alto ODO ZO OO OO

Physalia physalis

Hueicolla

X s Máx. Mim. n
Largo LU

Ancho OOO A ODO
Alto COSO ADO

Isla de Pascua

a s

Máx. Min. n

Largo HO Se:
Ancho OO Sd:
4

Alto Lo AD aio pl 1

174 Bol

Aunque esta nota no ha tenido por
objeto discutir sistemáticamente las es-
pecies aludidas, parece necesario señalar
que los ejemplares de Physalia concuer-
don con Ph. utriculus y con las láminas
18 y 19 de Bennett (1966) y no con Ph.
physalis sensu Totton (1965) Lám. 1,
fig. 1. Sin embargo, se ha preferido uti-
lizar el nombre de Ph. physalis por no
haber acuerdo entre los diversos autores
y por sinonimización en una sola de las
diferentes especies señaladas; en este
sentido, entonces, se ha seguido a Totton
(1965): 39) el que considera al género
Physalia como monotípico. El mismo
criterio general se puede aplicar a Vele-
lla spirans, habiéndose preferido este
nombre porque es el de más uso en
la literatura científica.

BIBLIOGRAFIA

Bennett, 1., 1966. The Fringe of the Sea.
Griffin Press, Australia. 261 pp.

. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Fagetti, G. E., 1958, Nota sobre Physalia
Physalis L. procedente de Isla de Pas-
cua. Rev. Biol. Mar. 7(1, 2, 3): 188-
190.

Hyman, L. A., 1940. The Invertebrates.
I. Protozoa through Ctenophora. Mc
Graw-Hill Book Company, Inc. U.S.A.
Vol. 1: 1-726.

Leloup, E., 1935. Hydropolypes Calyp-
toblastiques et Siphonophores récoltés
au cours de la Croisiere (1934-1935)
du Navire-Ecole Belge “Mercator”.
Bull. Mus. Royal Hist. Nat. Belgique,
11(34): 1-6, 3 figs.

Molina, J. IL, 1788. Historia Natural de
Chile. Vol. 1, 216 pp.

Totton, A. K., 1965. A Synopsis of
the Siphonophora. Trustees of the
British Museum (N. H.). The Thanet
Press, Margate, England. 230 p., 40
láms.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, pp. 175-176, 1984. 175

PRIMER REGISTRO DE ECHINO.
RHINUS COOKEI PIETSCHMANN,
1928 (PISCES: SQUALIFORMES:
SQUALIDAE) PARA CHILE

First record of Echinorhinus cooket
Pietschmann, 1928 (Pisces: Squaliformes:
Squalidae) in Chile.

Víctor H. Ruiz R.*
Jacqueline Fernández B.*

RESUMEN

Se da a conocer el hallazgo de un
ejemplar de Echinorhinus cookei Piets-
chmann, 1928 en el Golfo de Arauco
(37900'S; 73020"W), Chile, señalándose
por primera vez la presencia de esta
especie para el país, con lo cual aumenta
su distribución geográfica desde Huacho
(11910'S; 77950"W), Perú hasta el Golfo
de Arauco, Chile.

ABSTRACT

The finding of one specimen of Echi-
norhinus cookei Pietschmann 1928 in
Golfo de Arauco (37900'S; “73020"W),
Chile, is reported. This is the first record
for Chile and so its geographical distri-
bution is extended from Huacho “11010”
S; 77250"W), Perú, to Golfo de Arauco,
Chile.

Keywords: Squalidae, Echinorhinus, Geo-
graphical distribution, South-Eastern
Pacific.

La familia Squalidae (sensu Nelson,
1976) está dividida en tres subfamilias:
Squalinae, Dalatinae y Echinorhininae,
de las cuales sólo las dos primeras esta-
ban representadas en Chile (Bahamonde
y Pequeño, 1975). En nuestro país no
existían antecedentes sobre la presencia
de Echinorhininae, con excepción de
la mención por parte de Mann (1954)
sobre la posible presencia de Echino-
rhinus brucus (Bonnaterre) a lo largo
de la costa chilena, basado principal-
mente en la amplia distribución geo-
gráfica de esta especie en la mayoría de
los océanos.

La información disponible sobre la
distribución geográfica de E. cooke:z se-
ñala su presencia en Islas Hawaii, Sur
de California, Isla Guadalupe (frente a
Baja California) y en Huacho (Perú)
(Kato et al., 1967; Chirichigno, 1974).

El 27 de Agosto de 1983, durante fae-
nas de pesca artesanal con espinel de
fondo en el Golfo de Arauco, fue cap-
turado, aproximadamente a 400 m de
profundidad, un especimen de “gata”
que posteriormente fue identificado
como Echinorhinus cookei Pietschmann,
1928 (Kato et al., 1967; Chirichigno,
1974). Con esta captura se amplía su
distribución geográfica desde Huacho
(Perú) hasta el Golfo de Arauco (Chile).

Las características morfométricas del
ejemplar estudiado (el cual se encuentra
depositado en el Museo de Zoología de
la Universidad de Concepción (MZUC)
con el número 6229) se entregan en la
Tabla 1

*Universidad de Concepción, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales. Departamento de

Zoología, Casilla 2407, Apartado 10, Concepción, Chile.

176 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

TABLA

li

Caracteres morfométricos del ejemplar estudiado (en mm).

Longitud total 1355
Longitud preoral 130
Ancho bucal 165
Longitud del ojo 26
Distancia preocular 101
Espacio interorbital 152
Longitud ojo + espiráculo 60
Longitud del espiráculo 7
Espacio internasal menor il
Espacio internasal mayor 124
Espacio interdorsal 62
Long. hendidura branquial 65

Es probable que esta especie esté re-
presentada a lo largo de toda la costa
chilena y que sus capturas sean frecuen-
tes (por lo menos por embarcaciones co-
merciales), pero dichos ejemplares gene-
ralmente no llegan a los centros de in-
vestigación, por lo que su conocimiento
es escaso.

BIBLIOGRAFIA

Chirichigno, N., 1974, Clave para iden-
tificar los peces marinos del Perú.
Instituto del Mar del Perú, Informe
NO 44. Callao, Perú, 387 pp.

Longitud de la cabeza 390
Distancia predorsal 840
Base primera dorsal 75
Altura primera dorsal 70
Base segunda dorsal 67
Altura segunda dorsal 69
Base de la pectoral 105
Longitud de la pectoral 169
Longitud lóbulo dorsal

de la caudal 300
Altura mínima del

pedúnculo: caudal 96

Kato, S., Springer, S. y M. Wagner, 1967.
Field Guide to Eastern Pacific and
Hawaiian Sharks. U. S. Fish. Wild.,
Ser. Circ. NO 271.

Mann, G., 1954. Vida de los peces en
aguas Chilenas. Instituto Investigacio-
nes Veterinarias. Santiago de Chile.
342 pp.

Nelson, J., 1976. Fishes of the world. A
Wiley, Interscience Publication. New
York, U. S. A. 416 pp.

Bol. Soc. aL Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 177-178, 1984. 10777

EN TORNO A LA ACCION CLASTO-
GENA DE SECRECIONES
NATURALES DE ORGANISMOS
EUCARIONTES

On clastogenic action of eucaryotic
organisms natural secretions

M. Alarcón A., G. Cea C. y
G. Weigert Th.*

RESUMEN
- Se comenta la acción de secreciones de
arácnidos de la familia Opilionidae que
presentan acción clastogénica y su pro-
bable incidencia en mecanismos evolu-
tivos más generales.

E ISHREA OE
The clastogenic effect of secretions
from arachnida belonging to the Opi-
lionidae family and its possible inci-
dence on general evolutive mechanisms
is discussed.

Keywords: Arachnida, Opilionidae,
Mutagenesis, Evolution.

. Actualmente se sabe que existe una

amplia variedad de especies que presen-
tan adaptaciones químicas a la forma
de productos terminales o de metabo-
litos secundarios que, a través de efectos
neurotóxicos, citotóxicos o genotóxicos
ejercen una función ecofisiológica im-
portante en la regulación inter e intra

poblacional. Una situación particular-
mente interesante en relación a ésto,
encontrada en ciertos arácnidos de la
familia Opilionidae, es la que motiva
la presente nota.

Las secreciones producidas por dos
elándulas cutáneas cefalotoráxicas encon-
tradas en estos animales les confiere un
mecanismo eficaz de autodefensa contra
sus predadores y ha sido demostrada en
ellas la existencia de principios quimi-
cos volátiles que producen efectos anti-
bióticos sobre bacterias y protozoos (Es-
table y Col., 1955) e irritación intensa
sobre la piel humana. (Capocasale, 1968).

En 1956 leser y Ardao encontraron
que uno de los principales componentes
volátiles de este producto de secreción
era la dimetil p-benzoquinona y más
recientemente Drets y Col. 1982, han
determinado la acción citogenética de
este compuesto al tratar con ella células
cerminales de Orthoptera, linfocitos hu-
manos en cultivo y ratones in vivo, cuyos
mielocitos fueron estudiados posterior-
mente. En todos los casos demostraron
que esta sustancia era capaz de inducir
diferentes clases de aberraciones croma-
tídicas y cromosómicas estableciéndose
así la calidad de agente clastogénico de
este compuesto.

Llama la atención que entre las alte-
raciones del material cromosómico que
estas secreciones, a través de este tipo
de compuestos pueden producir, se en-
cuentren remodelaciones cromosómicas
que representan las bases para postular
a estos mecanismos de interacción entre
las especies, como componentes impor-
tantes de los procesos evolutivos.

*Departamento de Biología Molecular. Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales. Casilla

2407. Universidad de Concepción. Concepción. Chile.

178 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

La acción clastogénica por este tipo
de componentes de secreciones, que ac-
túan como mecanismos defensivos, puede
ser comparable a la de otras sustancias
como los antibióticos, cuya presencia
en el medio es tan antigua como la apa-
rición de los organismos eucariontes
más primitivos conocidos.

Los antibióticos, muchos de ellos clas-
tógenos, y/o mutágenos, son producidos
por microorganismos que pululan en
los suelos. La presencia de antibióticos
en el suelo pudo haber provocado la
evolución de genes de resistencia en las
bacterias sensibles presentes en ese medio.
Estos genes pueden ser plásmidos o genes
cromosómicos transferidos, más tarde, a
plásmidos. Mediante el traspaso de estos
genes a bacterias mo edáficas y pató-
genas para animales, se han hecho pre-
sentes las resistencias selectivas frente a
antibióticos, mecanismos que han sido
comprobados en la naturaleza.

Buen ejemplo se encuentra en la peni-
cilina que es producida por eucariontes
(Hongos), sin embargo, muchas bacterias
no patógenas del suelo producen una B-
lactamasa parecida a la que le confiere
resistencia a bacterias patógenas para el
hombre.

El empleo masivo de antibióticos en
la civilización humana ha alterado la re-
lación interespecifica entres hongos y
bacterias en el que se había alcanzado
un equilibrio entre organismos produc-
tores de antibióticos y organismos do-
tados de genes de resistencia antibiótica.
Experimentalmente, por selección direc-
cional o escalonada, se pueden obtener
cultivos bacterianos con un elevado grado
de resistencia frente a un determinado
antibiótico u otro compuesto químico
que se agregue selectivamente al cultivo
y en dosis crecientes. Esta presión de
selección permite elevar substancialmente
el nivel de resistencia de un cultivo
celular, lo que se traduce generalmente,
en una producción significativamente
alta de los sistemas enzimáticos compro-
metidos en el mecanismo de la resis-
tencia. El equilibrio logrado en la natu-
raleza a través de mecanismos de selec-
ción darwiniana, como se presume que
podría ocurrir por la experimentación
señalada, permitiría asumir que la acción

de sustancias tales como los antibióticos,
que inundan el entorno en donde se
desarrolla los eucariontes que lo pro-
ducen, no sólo puede ejercer una acción
citotóxica, sino que puede ser mutagé-
nica con incidencia evolutiva ya sea por
una adaptación selectiva de multiplica-
ción poligénica (de resistencia a antibió-
ticos) o bien como en el caso de los
Opiliónidos ser un mecanismo de eleva-
ción del potencial mutágeno y de remo-
delación, por clastogénesis, de los com-
plejos cromosómicos de los predadores.

Dentro de las azarosas y complejas
condiciones en que la mutación natural
se realiza a través del tiempo impulsando
la evolución de las especies, podría ser
que el mecanismo aquí señalado fuera
más general en la naturaleza, es decir,
la remodelación cromosómica inducida
por la acción de agentes químicos pre-
sentes en las secreciones, que aparente-
mente ejercen sólo una acción autode-
fensiva, pueda ser un factor importante
de especiación y más ampliamente dis-
tribuido en la naturaleza.

Por otra parte, si el efecto de estas
sustancias fuera solo meramente defen-
sivo parecería desmedido el que provo-
casen acciones genotóxicas de esa enver-
gadura, pero no debe descartarse que
también esta cualidad sea sólo causa del
azar.

BIBLIOGRAFIA
REFERENCIAS

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para el conocimiento de las distribu-
ción geográficas de los Opiliones de
Uruguay. Neotrópica, 14: 65-71.

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Fieser, L. F. and Ardao, M. I., 1956. In-
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Gonyleptidine. J. Am. Chem. Soc.,
78: 774781.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp. 179-182, 1984. 179

CONMEMORACION DEL 57 ANIVERSARIO DE LA FUNDACION
DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA DE CONCEPCION (1927 — 1984)

ACTO SOLEMNE, SOC. BIOL.
CONCEPCION

Concepción, 2 de mayo de 1984.

Con motivo de celebrar el 57 aniversa-
rio de su fundación, la Sociedal de Bio-
logía de Concepción efectuó un Acto
Solemne, al cual asistieron autoridades
universitarias, el directorio de la Socie-
dad, socios, docentes invitados y estu-
diantes.

Durante el acto, se otorgó por primera
vez el premio “Roberto Donoso-Barros”,
recientemente instituido, con el objeto
de galardonear cada año al mejor tra-
bajo publicado en los tres últimos bole-
tines. En esta ocasión, el trabajo me-
recedor al premio fue: “Ecological as-
pects and crop of Suillus luteus in Pinus
radiata forests in the region del Bio-Bio,
Chile”, de los autores Sres. Norberto
Garrido, Clodomiro Marticorena y Ed-
gardo Oehrens publicado en el volumen
54, páginas 89-101.

Se dio cuenta de la marcha de la insti-
tución, enfatizando su continuidad, que
la distingue entre sus congéneres de habla
hispana. Al término del acto, hubo una
reunión informal durante la cual de-
partieron activamente los asistentes.

Texto del discurso leído en esa oca-
sión por el presidente de la Sociedad,
Dr. Jorge N. Artigas.

Autoridades
Invitados especiales
Socios

Docentes
Estudiantes.

Es para el que habla, una oportunidad
de gran significación, dirigirse a un ú-
blico tan selecto e ilustrado como el
que se ha reunido en este auditorium.

El motivo de este acto solemne, es ce-
lebrar el quincuagésimo séptimo aniver-
sario de la Sociedad de Biología de
Concepción y entregar un importante
premio a distinguidos socios aquí pre-
sentes.

Como hemos tenido la oportunidad de
destacar ya en otras oportunidades, esta
Sociedad es la más antigua Sociedad de
Biología de Chile con una labor ininte-
rrumpida de 57 años de trabajo cientí-
fico productivo. Son pocas las sociedades
que pueden emularla en latinoamérica,
por ello, es justo declararla motivo de

180 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

orgullo para el país y es, por supuesto,
un orgullo aún mayor para los que
pertenecemos a ella y nos ha tocado en
suerte dirigir por un tiempo su destino.

NaceselS0Aderabulfde 1927 congel
objetivo preciso y claro de “fomentar
la investigación en las diferentes ramas
de las ciencias biológicas y la difusión
de los conocimiestos de esas ciencias”.
Nombres cuya mención toca las raíces
mismas de la Universidad de Concep-
ción, quedan grabados para la posteridad
como su directorio fundador: Alejandro
Lipchutz, Ottmar Wilhelm, Ernesto
Mauzier, Alcibíades Santa Cruz, Guiller-
mo Grant, Salvador Gálvez y Carlos
Oliver-Schnaider. Todas figuras de la
más alta categoría científica de su época;
todos ellos dejaron en sus respectivos
campos, líneas de investigación que pos-
teriormente han fructificado con el que-
hacer de sus sucesores.

Nos preguntamos, ¿por qué sucede
esto en Concepción y no en otra parte?
Los que han buscado las respuestas, han
encontrado tres, una en el plano histó-
rico, otra en el social y, finalmente, tal
vez la más importante, en el plano aca-
démico.

En 1927, la Universidad de Concepción
se hallaba implantada en un área orgu-
llosa de su pasado y su presente. Se co-
municaba directamente con Europa y
Estados Unidos, sin intermediarios for-
zosos; recibía directamente la savia ex-
tranjera y sus habitantes, la incorpora-
ban con prontitul a su quehacer cultu-
ral; sus habitantes además, tenían un
fuerte y leal espíritu regional. Los que
no eran nacidos en ella, eran fácilmente
envueltos por sus atractivos naturales y
culturales y se quelaban por largo
tiempo o para siempre. Estas fueron apa-
rentemente las razones culturales y so-
ciales. La razón académica llegó con el
espíritu del fundador de la Universidad,
esíritu que fue compartido sin reservas
por sus colaboradores inmediatos.

Don Enrique Molina Garmendia,
creía que una Universidad debía ser el
lugar donde la creación espiritual estu-

viese permanentemente protegida. Para
lograrlo, la Universidad otorgaba a sus
profesores, abundantes franquicias de
todos tipos y, tal vez, en su afán por su-
plir la falta de medios materiales, aumen-
taba significativamente las otras. Y he
aquí la paradoja: bajo esta extraña situa-
ción de equilibrio compensado —que hoy
seguramente rechazaríamos-, nace en
Concepción, entre otras iniciativas simi-
lares la de crear una sociedad de bio-
logía, que reuniera a los biólogos de la
ciudad “para que se comunicaran sus
inquietudes y dieran cuenta del resul-
tado de sus trabajos. Así, nace esta Socie-
lad de Biología de Concepción. Al año
siguiente, en 1928, se transforma en ins-
titución hermana de las Societé de
Biologie de Paris y de la Societé Cien-
tifique du Chili. Estas sociedades, la
ayudan en sus primeros pasos, efectuando
un activo intercambio. La biblioteca
crece continuamente, llegando a ser la
biblioteca biológica especializada de
Concepción. A tal punto llega su incre-
mento, que ya en 1970 se hace inmane-
jable y se entrega íntegra, por decisión
de su directorio, a la Biblioteca Central
de la Universidad de Concepción.

Obediente al espíritu con que fue fun-
dada, de “hacer difusión de los conoci-
mientos de esa ciencia”, inicia la pu-
blicación de un boletín, en el cual se da
cuenta de las actividades de la sociedad,
se comentan libros y se publican resul-
tados de investigaciones originales, Se le
denomina BOLETÍN DE LA SOCIE-
DAD DE BIOLOGIA DE CONCEP-
CION y, el primer número aparece en
octubre de 1927, seis meses después de
la fundación de la Sociedad.

La Rectoría de ese tiempo, comprende
rápidamente el valor de esta naciente
actividad y la apoya sin reservas, cos-
teando íntegramente su impresión y fa-
cilitando su distribución. De allí en ade-
lante, el auspicio de la Universidad de
Concepción a la Sociedad, se mantendrá
invariable hasta nuestros días.

Así, la ciencia biológica, se hace crea-
tiva en Concepción y los resultados de
esta creación, son comunicados a la co-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 181

munidad científica a través del Boletín,
llegando con él a los más importantes
centros científicos del mundo. Más ade-
lante, destacados científicos extranjeros,
comunicarán a través de sus páginas.

Hoy en día, encontramos a esta Socie-
dad pletórica de actividad, pujante, orgu-
llosa de su posición y plena de proyectos
para un futuro inmediato.

Pero no todo ha sido fácil en su andar.
Diversos períodos de crisis imterna y ex-
terna han dificultado su quehacer pero
a la vez, han templado su espíritu. Los
distintos intereses entre las ramas de la
biología, luego se hicieron presentes.
Todos creían que era bueno para la
Sociedad lo que creían era bueno para
ellos. Los grupos se enfrentaron con la
suave-dureza de la ciencia. Así vemos
que, a lo largo de su existencia, han
predominado alternadamente, las ciencias
naturales, la medicina, la farmacología,
la biología experimental, la anatomopa-
tología, la fisiología animal, los recursos
naturales, etc. En el boletín se puede,
a lo largo de sus 54 tomos, leer la histo-
ria del desarrollo de la biología en el
Sur de Chile. -

Se han publicado 54 volúmenes en 56
años, prácticamente un volumen por año.
¡Cuántos editores habrán quedado
heridos en el camino!

Los peores embates, sin embargo, han
venido de entre los que más debieran
haberla protegido. Ellos se han centrado,
por ser más vulnerable, en el Boletín.
Algunos espíritus sencillos, extrapolando
e infiriendo de lo que estiman son he-
chos consumados, concluyen que sólo
son válidos los trabajos publicados en
idiomas extranjeros y en revistas cien-
tíficas “internacionales” (curiosamente
para ellos, revista “internacional” es
cualquiera que no sea chilena). Esto que
nace como una idea personal en defensa
del interés personal, es desafortunada-
mente oída por algunas autoridades,
las que llegan primero a recomendar que
se publique en revistas extranjeras y
luego, este criterio suicida, se adopta
como elemento gravitante en las pautas

de evaluación del personal científico.
Nos es difícil pensar en un acto cons-
ciente más grave de autodestrucción.
Nuestra posición ha sido ¡invariablemente
adversa a ello y así lo hemos hecho pre-
sente a las autoridades en múltiples
ocasiones. Hemos cumplido con nuestra
obligación, confíamos haber llegado a
tiempo.

La ciencia no tiene paises, pero sí hay
países que producen ciencia. La manera
más fácil de quitarle a nuestra patria
su calidad de país productor de cien-
cia, es disimular o hacer confuso el
origen de su producción; para ello, nada
mejor que diluir esta producción en
numerosas revistas americanas, alemanas,
inglesas, francesas, belgas, italianas, Ca-
nadienses, costaricenses, venezolanas,
brasileras, argentinas, australianas, entre
otras, donde los trabaojs no llevan, en
algunos casos, ni siquiera la pequeña nota
al pie que indique quien paga el sueldo
mensual del autor y, de quien son los
laboratorios, bibliotecas e instrumental
especializado que posibilitaron el traba-
jo; hemos visto trabajos donde sólo apa-
rece la dirección postal del autor.

Muchos científicos chilenos creen tener
un compromiso con la ciencia de nuestra
patria, que sus esfuerzos deben tener
como meta objetivos más altos que el
simple éxito personal; que el trabajo
“ientífico, más que una acción en busca
de lo inmediato, sea parte de la acción
futura de los que los sucederán. Así lo
creemos nosotros también.

No debe extrañar entonces que estemos
firmemente dispuestos a defender las
publicaciones científicas chilenas y, en
especial, nuestro viejo Boletín.

Es posible que no podamos convencer
a algunos científicos personalistas, pero
parece difícil que no lo comprendan
nuestros administrativos porque:

El Boletín aporta en canje a la Y
versidad de Concepción y con ello al
país, 116 títulos, la gran mayorí
de los cuales,de otro modo, no es-
tarían en nuestras bibliotecas.

182 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 55, 1984.

— Nuestros autores reciben suficientes
apartados como para repartir direc-
tamente entre sus colegas de todo
el mundo, con lo cual comprometen
al colega, quien a su vez, les envía
sus propios trabajos a medida que
los publica. Con ello, nuestros inves-
tigadores forman una biblioteca per-
sonal de apartados tan actualizada
como es posible imaginar, quedando
en inmejorables condiciones para
abordar investigación de frontera.
Por supuesto que esto no interesa
a quienes no tienen apartados que
enviar.

— La aproximación de la fecha del
envío de un Boletín a la imprenta,
crea un estímulo directo sobre los
autores que poseen trabajos a medio
redactar. Los alienta terminarlos el
saber que pronto estarán publica-
dos.

— Es necesario agregar, además, que
el envío regular de Boletines a 41
países y 108 instituciones, es estar
presente en los lugares en que se
debe estar presente, con nuestra
producción científica perfectamente
identificada, facilitando nuevos con-
tactos, asegurando nuestra actualiza-
ción.

La Sociedad está orgullosa de su labor
y, consciente del estímulo necesario a
toda actividad humana, ha creado a
partir de este año, el premio “Dr. Ro-
berto Donoso—Barros”, para galardonar
al mejor trabajo publicado en los tres
últimos boletines. Este premio, que lleva
el nombre del que fue presidente de la

Sociedad hace algunos años y pereciera
trágicamente durante el ejercicio de su
cargo, está destinado a mantener vivo
el interés por publicar en nuestras re-
vistas, especialmente el de nuestros cien-
tificos jóvenes, a quienes quisiéramos
explicar que, la calidad de un trabajo
se expresa por sí misma, sim importar
el idioma o la revista en que se exponga
y, el científico que aborde posterior-
mente un tema similar al suyo, deberá
encontrar su trabajo, donde quiera que
esté publicado, de no hacerlo o de no
lograrlo, se le podría imputar el cargo
de “no estar al día en la literatura per-
tinente”.

La decisión de dónde publicar, debe
ser una decisión personal, no desearía-
mos tampoco estar sometidos a obliga-
ciones a las que fatalmente el hombre
termina revelándose. No estamos de
acuerdo, por ejemplo, con la política de
numerosos países donde los científicos
están obligados a publicar en el idioma
del país y en revistas del país para
obtener apoyo económico del gobierno.
Deseamos para nuestros científicos la
libertad de elección y, que al ejercerla,
su conciencia les indique cómo hacerlo
con justicia y lealtad.

Terminamos haciendo votos por el
éxito de nuestra Sociedad, para que fiel
seguidora del espíritu de sus fundadores,
continúe: “Fomentando las diferentes
ramas de las ciencias biológicas y la
difusión de los conocimientos de esa
ciencia”.

Muchas Gracias.-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, pp- 183 - 185, 1984, 183

OPUS SANETIRO

EL PROFESOR DR. CARLOS HENCKEL CHRISTOPH
1899 — 1984

El profesor Dr. Carlos Henckel Ch.,
ha fallecido inesperadamente a los 85
años de edad, en Múllheim (Alemania
Federal), después de 61 años (54 en nues-
tro país) del más valioso y multiforme
trabajo de investigación para el cono-
cimiento científico de la morfología y
de una destacadísima labor docente, en
las Universidades de Friburgo, en Ale-
mania, y la de Concepción.

El profesor Dr. C. Henckel nació el
11 de Marzo de 1899 en Estrasburgo,
ciudad que en esa época formaba parte
de Alemania. Comenzó sus estudios de
Medicina en la Universidad de esa
ciudad, los prosiguió en Friburgo y fina-
lizó en Munich, y en esa obtuvo su título
de médico a principios de 1923 y el
Grado de Doctor en Medicina a fines
de ese mismo año.

Comprendió desde muy joven la voca-
ción científica que albergaba su espíritu
y la decidida inclinación por las ciencias
morfológicas que alentó y cultivó du-
rante su larga vida. Así, ingresa como
Ayudante de las Colecciones Antropo-
lógicas y Prehistóricas del Estado de
Munich (1923); luego, y hasta 1925, fue
Ayudante del Departamento de Genea-
logia y Demografía del Instituto de In-
vestigaciones Psiquiátricas de Munich.
Más tarde obtiene el cargo de Ayudante
del Instituto de Anatomía de la Univer-
sidad de Friburgo, donde en muy corto
plazo y gracias a la excelencia de su
preparación científica y del valor de sus
ya numerosos trabajos de investigación,
obtiene, primero el cargo de Docente
Libre (Privat Docent) en 1926 y luego
el de Profesor Extraordinario de Ana-
tomía, en 1930.

Había así iniciado en forma brillante
y rápida la carrera académica en su
patria, la que le aseguraba un auspicioso
porvenir en la Universidad alemana.

En 1930, la Escuela de Medicina de la
Universidad de Concepción, envió a Ale-
mania a su Director, Profesor Dr. Er-
nesto Fischer—Klein, con la misión de
contratar académicos para sus recién
creados Institutos de Histología y Ana-
tomía Patológica respectivamente. Para
el Instituto de Histología, de la terna
propuesta la elección recayó en el joven
Profesor Dr. Carlos Henckel. Al mismo
tiempo se concretaba la contratación del
Profesor Dr. Ernesto Herzog para el Ins-

184 Bol

tituto de Anatomía Patológica. Los nue-
vos académicos arribaron a esta ciudad
en Octubre de 1930, e iniciaron de in-
mediato sus actividades.

Al Profesor Dr. Carlos Henckel le co-
rrespondió organizar el Instituto de His-
tología recién creado, para lo cual sólo
contaba con un reducido local, algunos
microscopios y escaso material bibliográ-
fico. Gracias a su gran capacidad de tra-
bajo, tenacidad, visión y dotes de orga-
nización, en poco tiempo logró que el
nuevo Instituto estuviera entre los me-
jores del país.

En el aspecto docente, desde un co-
mienzo estuvo a cargo de las cátedras
Histología y Neuroanatomía Microscó-
pica para las Escuelas de Medicina y
Odontología. Fue fundador de la cátedra
de Embriología Humana, la que por su
iniciativa fue introducida al plan de
estudios de las escuelas de Medicina del
país, a partir del año 1937. Entonces el
Instituto pasó a denominarse de Histolo-
gia y Embriología.

El Profesor Dr. Carlos Henckel fue un
docente de excepción, combinaba la ense-
ñanza teórica y práctica en forma armó-
nica y motivadora. En la clase informaba
de lo básico y fundamental de la materia
y completaba su exposición con una
abundante colección de macromodelos,
láminas y diapositivas. La clase imvania-
blemente, continuaba con una demostra-
ción, en la que mediante preparaciones
histológicas escogidas se ilustraban las
diversas estructuras explicadas. Además,
la enseñanza teórica era complementada
con un exigente Curso Práctico, en el
cual los alumnos tenían una activa patr-
ticipación.

El Profesor Dr. Carlos Henckel era del
todo realista y racional, se apartaba de
todo lo exagerado e irreal. Gracias a sus
facultades intelectuales era capaz de
concebir y presentar sus lecciones con
claridad y lógica perfectas de tal modo
que, a pesar de ciertos problemas de
pronunciación, constituía ella todo un
goce estético. Su especial inteligencia lo
capacitaba para distinguirse también
brillantemente como escritor científico.
Su obra “TIOPOGRAPHISCHE ANA-
TOMIE”, que completó su 220 edición
por la prestigiosa editorial alemana,

. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984.

Springer Verlag y que en 1979 fuera tra-
ducida al japonés (UNI Agency Inc. To-
kio) es la prueba palpable de lo que afir-
mamos. Este texto está escrito en forma
pertecta en cuanto a estilo y exposición.

En cuanto a su labor de investigación,
fue muy amplia y de gran interés y está
reflejada en la publicación de 150 tra-
bajos y/o monografías en revistas espe-
cializadas tanto nacionales como extran-
jeras, las que abarcan diferentes campos
de la Morfología como Antropología Fí-
sica, Anatomía, Histología, Embriología,
Neuroanatomía. Entre los temas aborda-
dos por el Profesor Dr. Carlos Henckel
citaremos: en Histología: estructura fun-
cional de huesos y cartílago, coloración
vital de la pared de vasos sanguíneos,
sistema retículo endotelial, estructura
del estómago, hígado, aplicación de mé-
todos de microincineración, etc.

En Embriología: histogénesis de crestas
palatinas, de papilas caliciformes, hipo-
tricosis congénita, discos intervertebrales,
desarrollo de la cuerda dorsal, histogé-
nesis de la articulación témporo-mandi-
bular, ontogénesis del órgano de la vi-
sión, etc.

En Antropología Física: estudios antro-
pológicos de aborígenes chilenos, estudios
serológicos, estudios craneométricos, ob-
servaciones antropológicas de los habi-
tantes de la Isla de Pascua, etc.

En Anatomía: destacamos su contribu-
ción al conocimiento de la anatomía
comparada de la fauna chilena, que in-
cluye observaciones hematológicas, órgano
de la visión de ciclóstomos, hígado de
mamíferos acuátiles, etc.

Los estudios sobre la Antropología Fi-
sica de aborígenes chilenos, fueron de
tal trascendencia que el Smithsonian
Institución Burean of American Ethno-
logy de New York (USA) los seleccionó
para ser incluidos en su libro “Handbook
of South American Indians”.

Por otra parte, fueron numerosas las
tésis de grado patrocinadas por el Pro-
fesor Dr. Carlos Henckel, y así egresados
de Medicina y Odontología, bajo su
sabia dirección, desarrollaron profundos
y extensos trabajos de investigación,
muchos de los cuales, merecieron ser
publicados en revistas de la especialidad.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 55, 1984. 185

La intensa labor de investigación lo
llevó a participar en numerosas Socie-
dades Científicas, (17) algunas de las
cuales contribuyó a fundar: como la So-
ciedad Luso - Hispano - Americana de
Anatomía y la Sociedad de Anatomía
Normal y Patológica de Chile. En otras
fue designado miembro correspondiente
como en la Academia Chilena de Cien-
cias Naturales, en la Sociedad Chilena
de Historia Natural, Deutsche Gesells-
chaft fiir Sáugetierkunde; Deutsche Ber-
liner Gesellschaft fir Anthropologie,
Ethnologie und Atgeschichte; en la Aca-
demia de Doctores de Madrid, y en la
Sociedad Peruana de Anatomía.

Mención especial merece su partici-
pación en la Sociedad de Biología de
Concepción, que a la llegada del Pro-
fesor Dr. Carlos Henckel tenía sólo tres
años de vida. Se incorporó de inmediato
a sus actividades y mantuvo una entu-
siasta y activa participación que se ex-
presó en la presentación de una serie
de trabajos en su seno. Luego fue in-
corporado al Directorio de la Sociedad
y desde su cargo de Bibliotecario orga-
nizó eficientemente el canje del Boletín,
publicación oficial de la Sociedad, con
las más diversas Instituciones Científi-
cas afines del mundo, actividad que
habría de mantener hasta la fecha de su
muerte. Como reconocimiento a su im-
portante y prolongada labor, en 1977,
fue designado Socio Benemérito de esta
Institución.

Mantuvo siempre relaciones cordiales
con otros hombres de ciencia prominen-
tes de su tiempo, como así mismo una
activa comunicación con especialistas
tanto nacionales como extranjeros. Fue
un asiduo participante en Congresos
Científicos y era ya tradicional que cada
dos años, últimamente cada año, viajara
a Europa, participara en Congresos y
visitara centros científicos de su interés.
Al mismo tiempo, se reencontraba con
sus raíces familiares y culturales.

El Profesor Dr. Carlos Henckel obtuvo
su jubilación en 1966, pero la Univer-
sidad consciente de sus relevantes con-
diciones de académico lo recontrató en
horario parcial, para que continuara
dictando la asignatura de Embriología
Humana, lo que haría con sin igual
entusiasmo y capacidad. Desde luego, su
asistencia al lugar de trabajo, excedía
con creces el horario contratado. En
1981 la Universidad de Concepción, en
solemne Acto Académico, le otorga una
merecida distinción por cumplir 50
años de initerrumpida y fructífera acti-
vidad académica.

El Profesor Dr. Carlos Henckel des-
pués de varios años de residencia en Chi-
le e incorporado de lleno en la vida del
pais, que conocía hasta sus más alejados
rincones y por el que sentía gran admi-
ración y cariño, decidió obtener la na-
cionalidad chilena. Oficializó así lo que
espiritualmente ya era, es decir, un ciu-
dadano más de este país, al que sirvió
desde su actividad universitaria en forma
tan fecunda y admirable.

El Profesor Dr. Carlos Henckel sintió
un gran amor por su segunda patria, a
tal punto que intuyendo su próximo
fin, dispuso que sus cenizas fueran traí-
das a Chile y esparcidas en el mar, ese
mar que junto a la naturaleza del país
él tanto admiró y amó.

Así, durante más sesenta años estuvo
estrecha e intensamente ligado a nume-
rosas instituciones y organismos nacio-
nales e internacionales y en cada uno
de ellos dejó ejemplo y cariño, trabajos
y realizaciones, anhelos y recuerdos.
Abandonó esta vida, con la maciza ple-
nitud de la labor cumplida y al cabo
de una existencia larga e intensamente
aprovechada.

Prof. Rodolfo Paz Ossorio.-

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REGLAMENTO DE PUBLICACION DEL BOLETIN DE LA SOCIEDAD
DE BIOLOGIA DE CONCEPCION

NORMAS GENERALES

El Boletín de la Sociedad de Biología de Concepción publica trabajos cien-
tíficos sobre temas relacionados con biología. Aparece en la torma de uno o más volú-
menes al año, con un número variable de contribuciones. Se podrá publicar trabajos
en español, inglés y francés, reservándose el comité editor el derecho de autorizar la
publicación de algunos en otras lenguas.

Los trabajos, que deben ser expuestos en sesiones de la Sociedad de Biología
de Concepción, por el interesado o su representante, son de dos categorías: mayores y
notas científicas. Los mayores son aquellos cuya extensión mínima es de seis (6) y
máxima de veinte (20) páginas dactilografiadas a doble espacio tamaño oficio; las notas
científicas son aquellas de menos de seis (6) páginas dactilografiadas; en todo caso el
comité de publicación decidirá su clasificación.

El texto de las notas será continuo, publicado en páginas a dos columnas y
tendrán el siguiente diseño: Título; nombre del autor y lugar de trabajo; Abstract en
inglés; Exposición continua del objeto de la nota; Bibliografía de acuerdo a las reglas
señaladas más adelante. Las notas podrán llevar ilustraciones o gráficos si ellos son
indispensables, mas en ningún caso mayor de dos, cada uno de un cuarto de página,
los que se ajustarán a las condiciones estipuladas más adelante para los gráficos y foto-
grafías.

Tanto las notas como los trabajos pasarán por el comité editor, quien las
entregará para su revisión a pares. La aceptación para su publicación incumbe exclu-
sivamente a este comité.

Ocasionalmente podrá el comité editor dedicar un volumer completo a un
trabajo de mayor envergadura si la calidad e importancia de éste lo justificaren.

Los trabajos sistemáticos deben ajustarse a las normas establecidas por los
códigos: “Internacional de Nomenclatura Botánica” e “Internacional de Nomenclatura
Zoológica”, respectivamente.

CARACTERISTICAS QUE DEBEN REUNIR LOS MANUSCRITOS PARA SER
ACEPTADOS POR EL COMITE EDITOR

].- Ser expuestos previamente en una reunión de la Sociedad de Biología de Con-
cepción.-

2.- Entregarse en un original y dos copias, dactilografiadas a doble espacio en papel
oficio, con un margen mínimo de 2,5 cm. en todos los contornos. Las copias deben
incluir copias xerox o fotoiopias de las ilustraciones.

5.-

10.-

11.-

El manuscrito debe seguir el siguiente orden: Título; Nombre de el o los autores;
Dirección de los autores; Título en Inglés; Keywords; Resumen en español; Abs-
tract en ingles (traducción del resumen); Abstract en otro idioma (optativo);
Introducción; Materiales y Métodos; Resultados; Discusión y Conclusiones; Agra-
decimientos; Bibliografía.

Si el trabajo incluye Tablas, éstas deberán ir numeradas correlativamente con
números romanos indicando su lugar en el manuscrito.

Las ilustraciones deben ser confeccionadas en papel diamante o cartulina de
buena calidad con tinta china negra; deben estar numeradas correlativamente
por números arábigos e indicarse su posición dentro del manuscrito; las explica-
ciones de las figuras deben dactilografiarse en conjunto en hoja aparte del manus-
crito o de las láminas. Para los efectos de reducción debe tenerse en cuenta que
el tamaño máximo de las figuras o láminas impresas es de 18,5 cm. de alto por
11,5 cm. de ancho; se recomienda que el tamaño (diagonal = 22 cm.) de las
láminas entregadas con el trabajo original, no exceda al triple de la diagonal
del espacio antes señalado (66 cm.); si la explicación de las figuras de la lámina
va al pie de la misma, el espacio necesario para ello debe considerarse dentro de
las medidas indicadas. Al reverso de cada lámina debe indicarse el nombre del

autor, título del trabajo, y total de láminas que éste incluye.

Sólo se aceptarán fotografías en blanco y negro de calidad óptima, en papel bri-
llante de grano fino.

En el manuscrito deben subrayarse con línea continua sólo los nombres científicos
genéricos e infragenéricos y las locuciones y las diagnosis latinas, para que poste-
riormente aparezcan en letra cursiva.

No se publicarán palabras con todas las letras mayúsculas en el texto, esta forma
se reservará para títulos, subtítulos, anreviaturas de instituciones, v otros espe-
cialmente autorizados por el editor. Los apellidos en el texto irán en minúscula,
con la inicial en mayúscula, sin subrayar.

En el manuscrito se debe indicar con absoluta claridad los títulos (dactilogra-
fiados todos en mayúsculas), cabezas de párrafos, ej.: “Descripción del macho”
(que debe ir en: primera letra mayúscula, siguientes minúsculas y todo subrayado
con línea cortada). La disposición de estos elementos los decidirá finalmente el
editor.

Las citas en el texto deberán corresponder a las aparecidas en la lista de “Biblio-
grafía” y se deberán hacer en la forma más abreviada posible, ej.: Gómez (1891:
46); si son varios los autores: Gómez et al. (1902: 107). No deben indicarse en el
texto las referencias bibliogáficas, salvo que esto se haga en el estudio sinonímico
de géneros y especies (Botánica). No debe usarse número guía por autor, ej.:
Smith (7). Si un autor tiene más de un trabajo en un año y la cita en el texto
puede llevar a confusión al ubicarlo en la lista de “Bibliografía”, se agregará
una letra luego del año, ej.: Pérez (1946a: 49).

La lista de autores y referencias se denominará “Bibliografía”, y comprenderá
solamente las referencias citadas en el texto. La forma de hacerlo se ajustará a
las pautas de los siguientes ejemplos:

a.- Libros

Borror, J. D. y D. M. DeLong. 1966. An introduction to the study of Insects. Holt,
Rinehart and Winston. USA: i-xi, 1-819.

Grassé. P. P. y A. Tétry (Eds). 1963. Zoologie 1. Encyclopédie de la Pléiade 14. Librairie
Gallimard. París: i-xvi, 1-1242.

Ross, H. H. 1964. Introducción a la Entomología general y aplicada. Trad. de la se-

gunda edición norteamericana. Edic. Omega, España. 536 págs.

b.- Artículos en Revistas

Androsova, E. I. 1972. Marine Invertebrates from Adelie Land, Collected by the XII**
and XV?% Antarctic Expeditions. 6. Bryozoa. Téthys suppl. 4: 87-102.

Banta, W. C. 1969. The Body wall of the Cheilostomata Bryozoa 11. Interzooidal Com-
munication Organs. J. Morph. 129(2): 149-170.

Donoso-Barros, R. 1972. Datos adicionales y comportamiento agresivo de Calyptoce-

Phalella caudiverbera (L.). Bol Soc. Biol. Concepción. 40: 95-103.

c.- Artículos de un autor en un libro editado por otro autor

Theoroides, J. 1963. Némathodes, In Grassé, P. P. y A. Tétry (Eds.). Zoologie I. En-
cpclopédie de la Pléiade 14. Librairie Gallimard, París: 693-722.

12.- Los nombres de las revistas botánicas deben abreviarse de acuerdo al B-P-H
Botanico —Periodicum—Huntianum).

15.- Si un trabajo, por alguna especial circunstancia, deba ser publicado en forma
diferente a las disposiciones anteriores, el autor debe exponer su petición al editor
antes de enviarlo.

APARTADOS

De cada uno de los artículos publicados se entregarán gratuitamente cincuenta
(50) apartados al o los autores.

Cuando se requiniere un número mayor de apartados esto deberá ser comu-
nicado oportunamente al editor, quien indicará el valor por cancelar, sobre los cin-
cuenta gratis, al o los interesados.

ESTE BOLETIN SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE),
EL 12 DE SEPTIEMBRE DE 1984.-

SOCIEDAD DE BIOLOGIA DE CONCEPCION — CHILE

Fundada el 30 de Abnil de 1927, destinada a “fomentar la investigación en las diferentes
ramas de las ciencias biológicas y la difusión de los conocimientos de esa ciencia”.
Sociedad afiliada a Societé de Biologie de Panis desde 1928.

DIRECTORIO FUNDADOR

Presidente: DR. ALEJANDRO LIPSCHÚTZ
Secretario: DR. OrTMAR WILHELM G.
Tesorero: DR. ERNESTO MAHUZIER
Director: DR. ALCIBIADES SANTA CRUZ
Director: DR. GUILLERMO GRANT
Socios: DR. SALVADOR GALVEZ

DR. CARLOS OLIVER SCH.

DIRECTORIO ACTUAL

Presidente: DR. JORGE ARTIGAS C.
Vicepresidente: DR. JUAN CONCHA B.
Secretario: LIC. MARIA E. CASANUEVA C.
Tesorero: LIC. GISELIND WEIGERT TH.
Bibliotecario: LIC. (OLGA ARACENA P.
Director del Boletín: PROF. HUGO I. MOYANO G.
Subdirector del Boletín: SR. TOMAS CEKALOVIC K.

PUBLICACIONES DE LA SOCIEDAD

— Boletín de la Sociedad de Biología de Concepción
— Publicaciones Especiales de la Soc. Biol. de Concepción

CANJE

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CORRESPONDENCIA:

Sociedad de Biología de Concepción
Casilla 2407
CONCEPCION — CHILE.

BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA DE CONCEPCION — CHILE
ISSN 007 850X

VOLUME 55 YEAR 1984

CONTENTS

CEKALOVIC, T.: Catalogue of the Chilean Pseudoscorpiones and Palpigradi
(dc A 7

DURET, J. P.: Additions to the genera Austrosynapha Tonnoir, 1929 and Tetra-
goneura Winnertz, 1846, from Chile (Diptera, Mycetophilidae). (Spanish). 37

MOYANO, H. IL: Chilean Cribrimorpha (Bryozoa Cheilostomata). (English). ........ 47
NORRIS, B., S. PALACIOS and H. SUAREZ: Electrodiagnostic evaluation in
Childhood Neuromuscular Diseases. (English). ..cuncno comenooo onononos 0ononnno enononon 73

OLIVA, M., M.: Proctoeces chilensis sp. n. (Trematoda, Strigeatoidea, Fellodisto-
midae), parasite of Sicyases sanguineus Muller 8: “Troschel, 1843 (Pisces:

Tc 87
TRAUB, C. E.: Descriptive anatomy of the dental system of Pudu Pudu Molina

(Arectiodaciyla ¡Conidac Sp A 93
MORILLAS, J. and H. VALERIA: Quantitative microscopy and sexual maturity

of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, 1836. (Spanish). occ. como. 119

VILLALBA, C. and J. FERNANDEZ: Lernanthropus guacoldae sp. n. (Copepoda:
Lernanthropidae), parasite of Sciaena deliciosa (Tschudi, 1844) (Pisces:
Scraenidas) rom Cie pa 127

AHUMADA, R., R. MORALES, A. RUDOLPH and P. MATRATI: Coastal upwe-
lling effects on the Early Diagenesis of Sediments in Concepción Bay, Chile.
(SPanisB): ciaodas cortes: sltaioo id essa 2albaN Adebades agro Jerte rio Teatro Veo o LEO 135

MONTOYA, R., F, ALAY, S. KESSI, J. VIDAL and J. CABELLO: Behavior of
lactate dehydrogenase isozymes from Akodon olivaceus Pencanus Philippi,

1900, brain homogenates stored at different temperatures. (Spanish). ........ 147
GAVILAN, J. F. and 1. HERMOSILLA: Experimental technique for aquatic
animals toxicological bioassays. (Spanish). momo. comme comence ernnnero oc. Cd o 155
NOTES

FERNANDEZ, J. and C. VILLALBA: Parasitic Helminths of Felis guigna Molina,

1182 (Carmvora Beda EI 161
RUIZ, V. H. and C. VILLALBA: A new Chilean record of Galeichthys Peruvianus
Lútken, 1874 (Pisces: Siluriformes: Ariidae). (Spamish). cmo cmemeoso eonorono onerons 165

ALVEAL, E. and V. H. RUIZ: Emmelichthys cyanescens (Guichenot, 1848) a
poorly known fish from Chile (Perciformes, Emmelichthyidae). (Spanish). 167

MOYANO, H. 1. and C. VALDOVINOS: On Physalia physalis (Linné, 1718) and
Velella spirans Forskal, 1771, from Tenth Chilean Region (Cnidaria,

NO ea ocaitids ora beso edosdeo caracas Casto] bietocos lpondipo: 171
RUIZ, V. H. and J. FERNANDEZ: First record of Echinorhinus cookei Piets-

mann, 1982 (Pisces: Squaliformes: Squalidae) in Chile. (Spanish). ........ 175
ALARCON, M., G. CEA and G. WEIGERT: On clastogenic action of eucaryotic

organisims natural secretions: (Spain esto ouenoso liesea nl decada) nena talli nas 177

COMMUNICATIONS AND MISCELLANEA

ARTIGAS, J. N.: On the 57 Anniversary of the Biological Society of Concepcion,
Ghile (1927-1984) (Spatslalescccsa andate da de ccoo leo dE E 181

PAZ, O., R.: Professor Dr. Carlos Henckel Christoph 1899 - 1984 (Obituary).
(Spanish). tion .ota da oo a A a UA 185

ISSN 0037 - 850X

BOLETIN ema 7
de la

SOCIEDAD de BIOLOGIA
de

CONCEPCION

BOL. SOC. BIOL. CONCEPCION TOMO 56, 1985

BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA DE CONCEPCION
ISSN 0037—850X (Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile)

“Publicación biológica periódica, no interrumpida, más antigua de Chile”.
Auspiciada por la Universidad de Concepción.

Director responsable:
Sub Director:
Representante legal:

PROF. HUGO I. MOYANO G.
SR. TOMAS CEKALOVIC K.
DR. JORGE N. ARTIGAS C.

Propietario del Boletín: Sociedad de Biología de Concepción.
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CONCEPCION

INORSES

BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA
DE CONCEPCION - CHILE

Organo Oficial de las Sociedades de Biología
y de Bioquímica de Concepción

Publicación Auspiciada por la Universidad de Concepción

TOMO 56 AÑO 1985

CONTENIDO

CEKALOVIC K., T. Catálogo de los Opiliones de Chile (Arachnida) ........... 7)
FERNÁNDEZ B., J. Estudio parasitológico de Merluccius australis (Hutton, 1872)
(Pisces: Merluccidae): Aspectos sistemáticos, estadísticos y zoogeográficos 31
JEREZ R., V. Posición taxonómica y redescripción de Procalus viridass (Philippi y
Enilippi 1864) (Coleoptera Chrysomeida a 43
OLIVA M., M. Presencia de Napporhynchus ornatus (Van Cleave, 1918) (Acanthoce-
phalaGorzorhynchidas) enel Norte de Chile 49

PARRA, L. E., ANGULO, A.O. y C. JANA-SÁENZ. Complejo hipofaríngeo y área
ocular larval de Chilecomadia moore: (Silva) y Chilecomadia valdiviana (Philippi)

(Esprdo pica os A a OE 51
STUARDO, J. y C. VALDOVINOS. A synonymic list of Chilean Bulimulids (Mollus-
UN e dl e AA A ns 55

VILLALBA, C. y L. DURÁN. Lepeophtheirus mugiloidis sp. n. (Copepoda: Caligidae)
parásito de Mugiloides chilensis (Molina, 1782) (Pisces: Mugiloididae) en Chile 59

COSCARON,S. Sobre la larva de Cnesiamima atroparva Edwards y su significado para
interpretar las relaciones filogenéticas de los simúlidos notogeicos (Insecta,

Diptera, Simuliidae) SO Ea 67
VILLALBA S., C. y J. FERNANDEZ B. Parásitos de Mola ramsayi (Giglioli, 1883)
(Eisces Modan A a a so oo El da DO 7

MOYANO G., H. Briozoos Marinos Chilenos V. Taxa nuevos o poco conocidos 79
LARRAÍN, A.P. A new species of subantarctic echinoid (Echinoidea:

Sclizastcnda o dE O e O eo a 0 115
VILLALBA S., C. Distribución, frecuencia y aspectos biológicos de Udonella caligo-

rum Johnston (Monogenea: Udonellidae) en Lepeophtheirus mugiloidis Villalba

y DU (COPE po dC OO 121
PARRA, L.E., ANGULO, A.O. y C. JANA-SÁENZ. Biología y estados inmaduros de

dos mariposas satúrnidas chilenas (Lepidoptera: Saturniidae): Caracteres

diagnósticos diferengialesiespecilicos ae O O IN 131
OYARZOR., H. y T. CEKALOVIC K. Aves observadas y capturadas en tramos de la
Carretera Austral (Chile) con nuevas localidades ....................... 141

JANA-SÁENZ, C. y A.O. ANGULO. Análisis de la posición taxonómica de Chloridea
chilensis Hampson, 1903, nóctuido nativo de importancia económica (Lepi-

dopteraNoctuidac a a e aja o pco Y CO 145
REYES, E.A., ALMONACID, M.E., HERMOSILLA, I. y A.O. ANGULO. Esper-
miohistogénesis en Neta chilensis (Walker) (Diptera: Brachycera) ......... 151

CERDA, L.A., JANA-SAENZ, C. y M.A. BEECHE. Detección de la “polilla del brote”
en Chile. Rhyacionia buoliana (Schiffermuller, 1776) (Lepidoptera:
ACA o O A LA e al dG A O AN A A 161
RINGUELET, R.A. Sinopsis de los Hirudíneos de Chile (Annelida) ............ 163

DURET, J.P. El género Mycetophila Meigen 1803, en la Patagonia (Diptera, Myceto-
philidae). Parte IX. Descripción de veinte especies Nuevas... .oooccooo....
MATAMALA, F.M., MARTÍNEZ, E., ETCHEPARE, I. y H. ROMO. Observaciones
en terreno y estudios in vitro de la fase conchocelis de Porphyra columbina
Montagne (Algae, Rhodophyta) ...ooooooccococoororocrorererrre rre
ALVEAL, E. y R. QUINTANA. Ciclo reproductivo estacional de Sebastes capensis
Gmelin, 1829 (Pisces, Scorpaenidae) de Bahía de San Vicente, Chile .....
CEKALOVIC K, T. y M. REYES. Descripción de la larva de Cicindela (Plectographa)
gormazi (Reed, 1871) (Coleoptera, Ciela IO erre

181

207

2

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 7-29, 1985.

CATALOGO DE LOS OPILIONES DE CHILE (ARACHNIDA)

Catalogue of the Chilean Opiliones (Arachnida)

TOMAS CEKALOVIC K.*

RESUMEN

Los Opiliones de Chile están representados por 89 espe-
cies incluidas en 43 géneros y 5 familias.

Para cada especie se incluye la sinonimia, la colección
donde se encuentran depositados los tipos, todas las locali-
dades de captura en Chile, su distribución geográfica y la
bibliografía.

INTRODUCCION

Los Arácnidos del Orden Opiliones Sunde-
vall, 1833 están representados en Chile por los
Subórdenes: Cyphophthalmes, Palpatores y
Laniatóres los cuales agrupan 5 familias con
43 géneros y 89 especies.

Las primeras especies dadas a conocer para
nuestro país son Gonyleptes scaber Kirby, 1819
descrito para Valdivia y Gonyleptes aculeatus
Kirby, 1819 del Estrecho de Magallanes.

Nuestros Opiliones han sido objeto de estu-
dios por diversos autores, destacándose por
orden cronológico: G.R. Gray (1883), C.L.
Koch (1839), Pablo Gervais (1847 y 1849),

*Conservador de Museo, Departamento de Zoología, Fa-
cultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales,
Casilla 2407, Universidad de Concepción, Concepción,
Chile.

SUMMARY

Chilean Opiliones are represented by a total of 89 species
in 43 genera and 5 families.

For each species, the synonymy, types” repository, re-
cords of capture, geographic distribution and references
are given.

Keywords: Arachnida. Opiliones. Taxonomy. Chile Neo-
tropical Region.

Walckenaer (1847), A.G. Butler (1876), Euge-
ne Simon (1884, 1891, 1902), J.C.C. Loman
(1889 y 1902), W. Soerensen (1889 y 1902),
Filippo Silvestri (1904 y 1906). Desde 1910 a
1961 el destacado aracnólogo alemán Carl F.
Roewer realiza investigaciones sobre los Opi-
liones del mundo, publicando más de un cen-
tenar de trabajos, entre los cuales hay 9 que
incluyen especies chilenas, cabe destacar en
forma muy especial por la importancia que
tiene para la fauna de Chile, los trabajos publi-
cados en los años 1913, 1923, 1929, 1943 y
1961. Entre los años 1932 a 1935 José Canals
en 3 de sus varias publicaciones, menciona a
especies chilenas, siendo el primero en reunir
en una lista las 52 especies conocidas hasta
1935. Más adelante el investigador del Brasil,
Cándido de Mello-Leitao, publica no menos
de 6 trabajos en los que está involucrada la

8

fauna de Chile, incluso describe algunos nue-
vos géneros y especies, durante el transcurso
de los aportes de Mello-Leitao, otro especialis-
ta, también del Brasil, S. de Toledo Pisa
(19492), describe nuevas especies para Chile,

En el lapso de los años comprendidos entre
1948 a 1954, B.A.M. Soares y H.E.M. Soares,
publican en varios volúmenes la “Monografía
de los géneros de Opiliones Neotrópicos”, tra-
bajo de gran ayuda para estudios posteriores a
nivel sudamericano. Entre 1955 y 1959, Raúl
Ringuelet de Argentina entrega varias contri-
buciones al conocimiento de la opiliofauna,
siendo la más interesante “Los Arácnidos Ar-
gentinos del Orden Opiliones” (1955), y otros
sobre biogeografía de estos interesantes artró-
podos.

En 1968, T. Cekalovié efectúa la recopila-
ción de todas las especies conocidas, publican-
do una lista actualizada y aportando informa-
ción de localidades de captura con sus respec-
tivas coordenadas, en el mismo año Helia E.M.
Soares revisa un lote de Opiliones enviados
para su identificación, como resultado descri-
be un nuevo género y cinco nuevas especies de
las familias Gonyleptidae y Triaenonychidae.

En el período comprendido entre 1969 a
1973, el aracnólogo A. Muñoz-Cuevas efectúa
trabajos sobre embriología y desarrollo para
algunas especies. En otros trabajos aporta con
dos nuevos géneros y cinco nuevas especies;
finalmente, T. Cekalovié en 1974 describe una
nueva especie del género Acropsopilio. En la
década 1974-1984 no se han registrado apor-
tes a nuevos taxones.

El presente Catálogo ofrece el conocimien-
to actual que se tiene de estos arácnidos para
Chile y sintetiza toda la información que espe-
ramos pueda ser de utilidad para futuros estu-
dios.

CLASE ARACHNIDA Lamarck, 1881

ORDEN OPILIONES Sundeval, 1833

SUBORDEN CYPHOPHTHALMES Simon,
1879

Familia SIRONIDAE Simon, 1879

Subfamilia STYLOCELLINAE Hansen y
Soerensen, 1904

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Género CHILEOGOVEA Roewer, 1961
Senckerbergiana biol. 42(1-2): 99, figs. 1-9

l. Chileogovea oedipus Roewer, 1961

Chileogovea oedipus Roewer, 1961, 42(1-2):
100, lám. 19, figs. 1-9; Cekalovié, 1968,
12(138): 6; Juberthie, 1969, 41(6): 1384, figs.
4g, 7d, 9, 1la; Goodnight, C.J. and Good-
night, M.L. 1980, 99(1): 128.

Localidad típica: CHILE. Chiloé: Chepu (Ti-
po en la Colección Roewer, R.11/13406/27).

Distribución: CHILE. Chiloé: Chepu.

SUBORDEN PALPATORES Thorell, 1876

Familia ACROPSOPILIONIDAE Roewer,
1923

Género ACROPSOPILIO Silvestri, 1904
Redia 2: 254-256

2. Acropsopilio chilensis Silvestri, 1904

Acropsopilio chilensis Silvestri, 1904, 2: 254-256,
figs. 35-46; Silvestri, 1906, 10(1): 34, figs. 35-
46; Roewer, 1923, p. 678, figs. 846-848 a-b;
Canals, 1932, 11: 151-152, figs. 1-3; Canals,
1935, 39: 70; Mello-Leitao, 1938, 10(4): 317-
318; Forster, 1948, 77(1): 139; Ringuelet,
1953, 16(137): 168-170, fig. 6; Ringuelet,
1955, 18(160): 113; Ringuelet, 1957, 1(1): 23;
Ringuelet, 1959, 5(2): 207, fig. 14; Cekalovié,
1968, 12(138): 6; Gruber, 1974, 78: 252; Ce-
kalovic, 1974, 48: 24, 28, fig. 7; Shear, 1975, 2:
79-80, fig. 13.
Acropsopilio ogloblini Shear, 1975, 2: 79.

Localidad típica: CHILE. Cautín: Pitrufquén
(Tipo, presumiblemente extraviado).
Distribución: CHILE. Cautín: Pitrufquén;
ARGENTINA. Río Negro: Lago Frías.

3. Acropsopilio normae Cekalovié, 1974
Acropsopilio normae Cekalovié, 1974, 48: 23-31,
figs. 1-7; Cekalovié y Artigas, 1981, 51(2): 82.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Pina-
res (Holotipo depositado en el Museo de Zoo-
logía, Universidad de Concepción, MZUC).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Distribución. CHILE. Concepción: Florida,
Pinares, Cerro Caracol (Mirador Alemán),
Camino a Ramuntcho, Penco, Estero Non-
guen.

Material examinado: 1 ej. Cerro Caracol (Mi-
rador Alemán), Abril, 9 1977, TC-71, T. Ce-
Kalovié; 1 ej. Camino a Ramuntcho, Abril, 6,
1980, N. Cekalovié y J. Laurido, 1 ej. Penco,
Abril, 23, 1977, TC-75, T. Cekalovié; 1 ej.
Penco, Marzo; 25, 1984, T'C-140; T. Cekalo-
vié; 1 ej. Estero Nonguén, Abril, 16, 1977,
TC-73, T. Cekalovié.

Familia NEOPILIONIDAE
Subfamilia ENANTIOBUNINAE

Género THRASYCHIRUS Simon, 1884
Bull. Soc. Zool. France 9: 142

4. Thrasychirus dentichelas Simon, 1884

Thrasychirus dentichelas Simon, 1884, 9: 142-
143, lám. 3, fig. 21; Simon, 1887, 6: 39, lám. 2,
fig. 10; Simon, 1902, 6(4): 45-46; Roewer,
1923, Die Weberck., der Erde p. 922; Canals,
1934, 5: 9; Canals, 1935, 39: 71; Mello-Leitao,
1938, 10(4): 320; Mello-Leitao, 1939, 17: 626;
Ringuelet, 1953, (2): 2; Ringuelet, 1955,
18(160): 113; Roewer, 1957, 38(5-6): 354;
Ringuelet, 1957, 1(1): 23; Ringuelet, 1959,
5(2): 213-215, figs. 15 b-17; Roewer, 1961,
42(1-2): 104; Cekalovié, 1968, 12(118): 6; Ce-
kalovié, 1974, 48: 303; Cekalovié, 1976, 37:
2D

Localidad típica. CHILE. Magallanes: Isla
Hoste (Cerro Sentry Boxes). (Tipo depositado
en el Museum National d'Histoire Naturelle,
Paris).

Distribución. CHILE. Santiago: Quebrada
Macul; Valdivia: Valdivia, Corral; Chiloé: 1.
Chiloé (Chepu); Magallanes: Puerto Edén;
Península Muñoz Gamero; Península de
Brunswick (Puerto del Hambre, Río San
Juan); Tierra del Fuego; Isla Hoste (Cerro
Sentry Boxes); Isla Navarino (Puerto Toro);
Isla Nueva; ARGENTINA. Neuquén (Nahuel

9

Huapi); Río Negro (Isla Victoria, Lago Frías);
Tierra del Fuego (Bahía Aguirre, Ushuaia,
Túnel); Isla de los Estados (Puerto Cook a
Vacouver).

Material examinado. CHILE. Concepción: 2
ejs. Parque Hualpén, Diciembre, 9, 1975,
Trampa Barber; Magallanes: 9 ejs. Isla Madre
de Dios (Caleta Henry), Octubre, 7, 1972, H.
Moyano; 2 ejs. Isla Navarino (Puerto Wi-
lliams), Agosto, 21, 1976, T. Cekalovié.

5. Thrasychirus gulosus Simon, 1884

Thrasychirus gulosus Simon, 1884, 9: 143; lám.
3, figs. 22-23; Simon, 1887, 6: 40; Roewer,
1923, Die Weberck., der Erde, p. 922, figs.
1066 a-b; Canals, 1934, 5: 9, fig. 3; Canals,
1935, 39: 71, fig. 10 c; Mello-Leitao, 1938,
10(4): 319, Mello-Leitao, 1939, 17: 626; Rin-
guelet, 1959, 5(2): 215-216, figs. 15 a-16; Ce-
kalovié, 1968, 12(118): 6; Cekalovic, 1974, 48:
303; Cekalovic, 1976, 37: 23.

Enantiobunus spinolosus Mello-Leitao, 1931,
3(2): 92; Mello-Leitao, 1938, 10(4): 319; Me-
llo-Leitao, 1939, 17: 626.

Localidad típica. CHILE. Magallanes: Isla
Hoste (Cerro Sentry Boxes). (Tipo depositado
en Museum National d'Histoire Naturelle,
Paris).

Distribución. CHILE. Magallanes: Punta Are-
nas; Isla Hoste (Cerro Sentry Boxes); AR-
GENTINA. Isla de los Estados (Puerto Roca).

6. Thrasychirus modestus Simon, 1902

Thrasychirus modestus Simon, 1902, 6(4): 46;
Roewer, 1923, Die Weberck., der Erde p. 922;
Canals, 1935, 39: 71; Mello-Leitao, 1938,
10(4): 320; Mello-Leitao, 1938, 17: 626; Roe-
wer, 1957, 38(5-6): 354; Ringuelet, 1959, 5(2):
216-217; Cekalovié, 1968, 12(118): 6; Cekalo-
vic, 1974, 48: 303; Cekalovié, 1976, 37: 23-24.

Localidad típica. CHILE. Magallanes: Isla
Hoste (Cerro Sentry Boxes). (Tipo depositado
en el Museum National d'Histoire Naturelle,
Paris).

Distribución. CHILE. Magallanes: Isla Madre
de Dios (Caleta Henry): Península de Bruns-

10

wick (Río El Ganso, Punta Arenas); Isla Hoste
(Cerro Sentry Boxes); Isla Navarino (Puerto
Toro, Puerto Pantalón); ARGENTINA. Tie-
rra del Fuego: Ushuaia.

Subfamilia GAGRELLINAE Thorell, 1886

Género HOLCOBUNUS Roewer, 1910
Abl. Ver. Hamburg. 19(4): 162
7. Holcobunus chilensis Piza, 1942

Holcobunus chilensis Piza, 1942, 2(4): 388-389,
fig. 3; Cekalovié, 1968, 12(118): 6; Soares,
1946, 4(13): 526.

Localidad típica. CHILE (Tipo N? 916, depo-
sitado en el Museu de Zoología, Universidade
de Sao Paulo).

Distribución. CHILE. (Sin especificar loca-
lidad).

Género PRIONOSTEMA Pococok, 1903
Ann. Nat. Hist. ser. 7, 11: 433
8. Prionostema auropictum Roewer, 1953
Prionostema auropictum Roewer, 1953, 29(1):
180; Cekalovié, 1968, 12(118): 6.
Localidad típica. CHILE. Tarapacá: Iquique.
(Tipo en la Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Tarapacá: Iquique.

9. Prionostema chilense Roewer, 1953
Prionostema chilense Roewer , 1953, 29(1): 180;
Cekalovié, 12(118): 6.

Localidad típica. CHILE. Tarapacá: Iquique
(Tipo en la Colección Roewer)

Distribución. CHILE. Tarapacá: Iquique.

10. Prionostema taeniatum Roewer, 1953
Prionostema taentatum Roewer, 1953, 29(1):
180; Cekalovié, 1968, 12(118): 6.

Localidad típica. CHILE. Tarapacá: Iquique
(Tipo en Colección Roewer).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.
Distribución: CHILE. Tarapacá: Iquique.

11. Prionostema umbrosum Roewer, 1953
Prionostema umbrosum Roewer, 1953, 29(1):
180; Cekalovié, 1968, 12(118): 6.

Localidad típica. CHILE. Tarapacá: Iquique
(Tipo en Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Tarapacá: Iquique.
Subfamilia PHALANGINAE Simon, 1879

Género PHALANGIUM Linné, 1758
Syst. Naturae Ed. 10: 618

12. Phalangium rudipalpe Gervais, 1849

Phalangium rudipalpe Gervais, 1849, 4: 28;
Atlas, lám. 1, fig. 3; Canals, 1935, 39: 71;
Cekalovié, 1968, 12(118): 6.

Localidad típica. CHILE. Provincias centrales.
Distribución. CHILE. Provincias centrales (sin
mayor información).

SUBORDEN LANIATORES Thorell, 1876

Familia TRIAENONYCHIDAE Soerensen,
1886

Subfamilia TRIAENONYCHINAE Pococok,
1903

Género AMERICOBUNUS Muñoz, 1972
Physis 31(82): 1-2

13. Americobunus ringueleti Muñoz, 1972

Americobunus ringuelets Muñoz, 1972, 31(82):
2-5, figs. 1-11.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Las Es-
caleras (Tipo en la Colección Muñoz; 2 Parati-
pos en el Museo de Zoología, Universidad de
Concepción, MZUC).

Distribución. CHILE. Concepción: Las Esca-
leras; Cerro Caracol (Mirador Alemán).

Género ARAUCANOBUNUS Muñoz, 1973
Physis, Sec. C. 32(84): 173-175

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

14. Arauconobunus juberthier Muñoz, 1973

Arauconobunus juberthiez Muñoz, 1973, 32(84):
175-179, figs. 1-19; Muñoz y Vachon, 1979,
2(6): 253-256, figs. B,D.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Agua
de la Gloria (Estero Chaimávida). (Holotipo y
Alotipo en la Colección Muñoz; 7 Paratipos en
el Museo de Zoología, Universidad de Con-
cepción, MZUC).

Distribución. CHILE. Concepción: Agua de la
Gloria (Estero Chaimávida).

Género CHILENUNCIA Muñoz, 1971
Bull. Mus. Nat. Hist. Nat. Paris, 42(5): 873-
874, figs. 1-28.

15. Chilenuncia donoso: Muñoz, 1971

Chilenuncia donoso: Muñoz, 1971, 42(5): 874-
877, figs. 1-28.

Localidad típica: CHILE. Maule: Treguale-
mu. (Tipo N* 3754 en Colección Muñoz; 3
Paratipos en Museo de Zoología, Universidad
de Concepción, MZUC).

Distribución. CHILE. Maule: Tregualemu.

Género DIASA Soerensen, 1902
Ergeb. Hamb. Magalh. Sammelr. 2: 11

16. Diasa michaelsen: Soerensen, 1902, 2: 11;
Roewer, 1914, 80-A(12): 75; Roewer, 1923,
Die Weberck., p. 590; Mello-Leitao, 1932, 17:
434; Canals, 1934, 5: 7, figs. 10 a-b; Mello-
Leitao, 1939, 17: 626; Ringuelet, 1955,
18(160): 113; Ringuelet, 1957, 1(1): 23; Rin-
guelet, 1959, 5(2): 257-258; Cekalovic, 1968,
12(118): 6; Muñoz, 1971, 42(5): 873, 879, fig.
28; Cekalovié, 1976, 37: 27.

Localidad típica. CHILE. Valdivia. (Tipo en el
Museo de Berlín).

Distribución: CHILE. Valdivia: Valdivia, Pu-
tabla; ARGENTINA. Río Negro: Lago
Nahuel Huapi; Lago Frías.

Género NUNCIA Loman, 1902
Zool. Jahb. Suppl. VI.

17. Nuncia (Nuncia) americana Roewer, 1961

Nuncia americana Roewer, 1961, 42(1-2): 102-
103, lám. 19, figs. 13-15; Cekalovié, 1968,
12(118): 6; Muñoz, 1971, 42(5): 873, 879, fig.
28.

Nuncia (Nuncia) americana Muñoz, 1971,

52(1-2): 97-101.

Localidad típica. CHILE. Chiloé: Isla de Chi-
loé (Cerros de San Pedro, Chepu). (Tipos en la
Colección Roewer, R.11/13414/65).

Distribución. CHILE. Concepción: Cerro Ca-
racol; Chiloé: Isla de Chiloé (Cerros de San
Pedro, Chepu).

Material examinado: CHILE. Concepción: 1
ej. Cerro Caracol, Septiembre, 15, 1968, TC-
14, T. Cekalovié; 15 ejs. Cerro Caracol, Di-
ciembre, 1966, TC-2, T. Cekalovié.

Género PARATTAHIA Roewer, 1914
Arch. Naturg. 80-A(12): 89, fig. 14

18. Parattahia chilensis Soares, 1968

Parattahia chilensis Soares, 1968, 21(27): 266-
268, figs. 13-14; Muñoz, 1971, 42(5): 873,
319 2429:

Localidad típica. CHILE. Concepción: Pina-
res. (Tipo N* DZ.7873, depositado en el Mu-
seu de Zoología, Universidade de Sao Paulo).

Distribución. CHILE. Concepción: Pinares.

Material examinado: CHILE. Concepción: 2
Topotipos, Pinares, Mayo, 6, 1979, T. Cekalo-
vic; 2 ejs. Estero Nonguen, Noviembre, 18,
1979, T. Cekalovié.

Género TRIAENONYX Soerensen, 1902
Erg. Hamb. Magalh. Sammelr. 2: 7

19. Triaenonyx arrogans Soares, 1968

Triaenonyx arrogans Soares, 1968, 21(27): 269-
271, figs. 18-19; Muñoz, 1971, 42(5): 873,
879, fig. 28.

12

Localidad típica. CHILE. Concepción: Pina-
res. (Tipo N* DZ. 7871 en el Museu de Zoolo-
gía, Universidade de Sao Paulo).

Distribución. CHILE. Concepción: Pinares.

20. Triaenonyx chilensis Soerensen, 1902

Triaenonyx chilensis Soerensen, 1902, 6(5); Ca-
nals, 1935, 39: 70; Cekalovié, 1968, 12(118):
6; Muñoz, 1971, 42(5): 873, 879, fig. 28.; Ce-
kalovic, 1976, 37: 27.

Localidad típica. CHILE. Llanquihue: Puerto
Montt. (Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Llanquihue: Puerto
Montt; Patagonia.

21. Triaenonyx corralensis Roewer, 1914

Triaenonyx corralensis Roewer, 1914, 80-A(12);
Canals, 1935, 39: 70; Cekalovié, 1968,
12(118): 6; Muñoz, 1971, 42(5): 873, 879, fig.
28.; Cekalovié, 1976, 37: 27.

Localidad típica. CHILE. Valdivia: Corral.
(Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Valdivia: Corral; Pata-
gonia.

22. Triaenonyx dispersus Roewer, 1914

Traenonyx dispersus Roewer, 1914, 80-A(12);
Canals, 1935, 39: 70; Cekalovié, 1968,
12(118): 6; Muñoz, 1971, 42(5): 873, 879, fig.
28.; Cekalovic, 1976, 37: 27.

Localidad típica. CHILE. (Tipo, no se obtuvo
información).

Distribución. CHILE. Maule: Cauquenes;
Concepción: San Vicente; Cautín: Temuco;
Valdivia: Valdivia; Llanquihue: Puerto
Montt.

23. Tnaenonyx rapax Soerensen, 1886

Tnaenonyx rapax Soerensen, 1886, (2); Canals,
1935, 39: 70; Cekalovié, 1968, 12(118): 6; Mu-
ñoz, 1971, 42(5): 873, 879, fig. 28.; Cekalovic,
1976, 37: 27.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Localidad típica. CHILE. Patagonia. (Tipo,
no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Cautín: Villarrica, Coi-
pué; Patagonia.

24. Triaenonyx valdiviensis Soerensen, 1902

Triaenonyx valdiviensis, Soerensen, 1902, 6(5):
9; Roewer, 1914, 80-A (12): 71, fig. 3; Roewer,
1923 Die Weber. der Erde, VI, p. 589, figs.
735 a-b; Roewer, 1931, 138(1): 150; Canals,
1934, 5: 7; Canals, 1935, 39-70; Mello-Leitao,
1939, 17: 626; Ringuelet, 1955, 18(160): 113;
Ringuelet, 1957, 1(1): 23; Ringuelet, 1959,
5(2): 264-266, fig. 34; Cekalovié, 1968,
12(118): 6; Muñoz, 1971, 42(5): 873, 879, fig.
28.

Localidad típica: CHILE. Valdivia: Valdivia.
(Tipo, no se obtuvo información).

Distribución: CHILE. Santiago: Santiago
(Quebrada Macul); Valdivia: Valdivia, Corral,
Putabla; Aysen; Patagonia, ARGENTINA.
Neuquén; Pucará, Isla Victoria, Lago Frías.

Género TRIANONYCHOIDES Soares, 1968
Papeis Avulsos Zool. 21(27): 268, figs. 15-17

25. Trianonychoides cekalovici Soares, 1968

Trianonychotdes cekalovici Soares, 1968, 21(27):
268-269, figs. 15-17; Muñoz, 1971, 42(5): 873,
879, fig. 28.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Pina-
res. (Tipo N* DZ. 7872 en el Museu de Zoolo-
gía, Universidade de Sao Paulo).

Distribución. CHILE. Concepción: Pinares.

Familia GONYLEPTIDAE Simon, 1879
Subfamilia GONYLEPTINAE Simon, 1879

Género ARAUCONOLEPTES Mello-Leitao.
1946
Com. Zool. Mus. Hist. Nat. Montevideo
2(35): 4

26. Arauconoleptes exceptionallis (Mello-Leitao,
1946.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Arauconoleptes exceptionallis Mello-Leitao,
1946, 2(35): 5-6, fig. 5; Soares y Soares, 1949,
7(2): 160; Cekalovié, 1968, 12(118): 6.

Localidad típica: CHILE. Osorno: Barra del
Río Bueno.

Distribución. CHILE. Osorno: Barra del Río
Bueno.

Género CORRALITA Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A(4): 169, 187

27. Corralia depressa (Loman), 1902.

Gonyleptes depressus Loman, 1902, 5, 2(1): 4-5,
lám. 1, fig. 2; Soerensen, 1902, 6(5): 29.

Corralia depressa Roewer, 1913, 79-A (4):
188, fig. 78; Roewer, 1923, Die Weberk der
Erde, VI, p. 471, fig. 590; Canals, 1935, 39:
69; Soares y Soares, 1949, 7(2): 164; Cekalo-
vic, 1968, 12(118): 6.

Localidad típica. CHILE. Valdivia: Corral.
(Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Valdivia: Corral.

Género DICONOSPELTA Canals, 1934
Est. Arachno!l. 5: 3

28. Diconospelta vazferreirae Mello-Leitao,
1946.

Diconospelta vazferrevrrae Mello-Leitao, 1946, 2
(35): 4; Soares y Soares, 1949, 7(2): 165; Ceka-
lovié, 1968, 12(118): 6-7.

Localidad típica. CHILE. Osorno: Barra del
Río Bueno. (Tipo en el Museo de Historia
Natural de Montevideo).

Distribución. CHILE. Cautín: Cuesta Lasta-
rria; Osorno: Barra del Río Bueno.

Material examinado: CHILE. 2 ejs. Cautín:
Cuesta Lastarria, Febrero, 22, 1973, T. Ceka-
lovié.

Género EUGONYLEPTES Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 169, 219

29. Eugonyleptes scaber (Kirby), 1818.

13

Gonyleptes scaber Kirby, 1818, 12: 453; Perty,
1832, Delect. An. Artic. p. 202; Koch, 1839, 7:
33, figs. 553-554; Gervais, 1844, 3: 103 ; Bu-
tler, 1873, (4), 11: 118.

Discocyrtus scaber Soerensen, 1902, 6(5): 30.

Eugonyleptes scaber Roewer, 1913, 79-A (4):
219-220; Roewer, 1923, Die Weberk der Er-
de. VI: 482; Canals, 1935, 39: 69; Mello-
Leitao, 1939, 17: 625; Soares y Soares, 1949,
7(2): 166; Ringuelet, 1957, 1(1): 17; Ringue-
let, 1959, 5(2): 400-401; Cekalovié, 1968,
12(118): 7; Capocasale, 1968, 14(44): 65-66.

Localidad típica. CHILE. Sud de Chile. (Tipos
machos y hembras depositados en el British
Museum).

Distribución. CHILE. Valdivia: Valdivia; Sud
de Chile; URUGUAY. Nota del autor. Por no
existir ejemplares en colecciones correspon-
dientes a localidades de Uruguay, Capocasale
(1968), elimina a esta especie para la fauna
uruguaya.

Género FONCKIA Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 168, 175

30. Fonckia processigera (Soerensen), 1902.
Gonyleptes processigerus Soerensen, 1902, 6(5):
25

Fonckia processigera Roewer, 1913, 79-A (4):
175-176, fig. 74; Roewer, 1923, Die Weberk
der Erde, p. 175; Canals, 1935, 39:69; Soares
y Soares, 1949, 7(2): 166; Cekalovié, 1968,
12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Llanquihue: Puerto
Montt. (Tipo macho en el Museo de Berlín).

Distribución. CHILE. Llanquihue: Puerto
Montt.

Género NEOGONYLEPTES Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 169: 199.

31. Neogonyleptes chilensis (Roewer), 1913.
Neogonyleptordes chilensis Roewer, 1913, 79-A
(4): 203; 205, figs. 85-86; Roewer, 1923, Die
Weberk der Erde, pp. 476-477, figs. 598-599;
Canals, 1935, 39:69.

Neogonyleptes chilensis Soares y Soares, 1949,
7(2): 196; Cekalovié, 1968, 12(118): 7.

14

Localidad típica. CHILE. Concepción: Con-
cepción. (Tipo, no se obtuvo información).
Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción.

32. Neogonyleptes docilis (Butler), 1876.

Gonyleptes docilis Butler, 1876, 12: 154, pl. 8,

figs. 2-2a; Loman, 1899, 5(2), 1: 3-4, pl. 1, fig.
1; Soerensen, 1902, 6(5): 24.

Neogonyleptes docilis Roewer, 1913, '79-A (4):
199, fig. 83; Roewer, 1923, Die Weberk der
Erde, p. 475, fig. 596; Canals, 1935, 39: 69;
Soares y Soares, 1949, 7(2): 196; Cekalovié,
1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Valdivia: Corral.
(Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción; Valdivia: Corral; Llanquihue: Puerto
Montt.

33. Neogonyleptes frontalis (Soerensen), 1902.

Gonyleptes frontalis Soerensen, 1902, 6(5): 28.

Neogonyleptes frontalas Roewer, 1913, 79-A
(4): 199, 210; Roewer, 1923, Die Weberk der
Erde, pp. 475-476; Canals, 1935, 39:69; Soa-
res y Soares, 1949, 7(2): 196; Cekalovié, 1968,
12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Concepción. (Tipo
no se obtuvo información..

Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción.

34. Neogonyleptes hamatus Soares, 1968.
Neogonyleptes hamatus Soares, 1968, 21(27):
259-261, figs. 1-7.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Pina-
res. (Tipo N? DZ. 7883, en el Museu de Zoolo-
gía, Universidade de Sao Paulo).

Distribución. CHILE. Concepción: Pinares.

35. Neogonyleptes ignotus Soares, 1968.

Neogonyleptes ignotus Soares, 1968, 21(27):
262-264, figs. 8-11.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Pina-
res. (Tipo N* DZ. 7881, en el Museu de Zoolo-
gía, Universidade de Sao Paulo).

Distribución. CHILE. Concepción: Pinares.

36. Neogonyleptes karschi (Soerensen), 1902.

Gonyleptes karschi Soerensen, 1902, 6(5): 26.

Neogonyleptes karschi Roewer, 1913, 79-A
(4): 203, fig. 84; Roewer, 1923, Die Weberk
der Erde, p. 476, fig. 597; Canals, 1935,
39:69; Soares y Soares, 1949, 7(2): 196; Ceka-
lovié, 1968, 12(118): 7; Soares, 1968, 21(27):
264.

Localidad típica. CHILE. Llanquihue: Puerto
Montt. (Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Concepción: Pinares;
Cautín: Villarrica; Llanquihue: Puerto Montt.

Género SADOCUS Soerensen, 1886
Arach. Austral 2: 85

37. Sadocus conspicillatus Roewer, 1913.

Sadocus conspicillatus Roewer, 1913, 79-A (4):
245; fig. 102; Roewer, 1923, Die Weberk der
Erde, pp. 493-494, fig. 620; Canals, 1935, 39:
70; Soares y Soares, 1949, 7(2): 211; Cekalo-
vic, 1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Con-
cepción. (Tipos machos y hembras en la Colec-
ción Roewer).

Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción.

38. Sadocus guttatus Soerensen, 1902.

Sadocus guttatus Soerensen, 1902, 6(5): 15;
Roewer, 1913, 79-A (4): 245; 248; Roewer,
1923, Die Weberk der Erde, pp. 493-494; Ca-
nals, 1935, 39:70; Soares y Soares, 1949, 7(2):
211; Roewer, 1961, 42(1-2): 102; Cekalovié,
1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Arauco: Lebu. (Ti-
po en el Museo de Copenhagen.

Distribución. CHILE. Arauco: Lebu.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

39. Sadocus polyacanthus (Gervais), 1847.
Gonyleptes polyacanthus Gervais, 1847, 4: 576;
Gervais, 1849; 4: 24-25, Atlas, lám. 1, figs. 7a-c;
Butler, 1873, 4(11): 114.

Gonyleptes plate: Loman, 1889, 5(2), 1: 5,
lám. 1, figs. 3-3a.

Sadocus urtellinosulcatus Soerensen, 1886, 2:
85, lám. 6, fig. 7.

Sadocus polyacanthus Soerensen, 1902, 6(5):
14; Roewer, 1913, 79-A (4): 245, fig. 101;
Roewer, 1923, Die Weberk der Erde, p. 493,
fig. 619; Roewer, 1930, 27(3): 381; Canals,
1934, 5:6; Canals, 1935, 39:70; Roewer, 1938,
30-B (10): 6; Mello-Leitao, 1939, 17: 625; Soa-
res y Soares, 1949, 7(2): 212; Ringuelet, 1955,
18(160): 113; Ringuelet, 1957, 1(1): 23; Rin-
guelet, 1959, 5(2): 409-411; Cekalovié, 1968,
12(118): 7; Cekalovic, 1976, 37: 24.

Localidad típica. CHILE. Provincias centrales.
(Tipos machos y hembras en el Museum Na-
tional d'Histoire Naturelle, Paris. Tipo de G.
plates de Valdivia: Corral, en el Museo de
Berlín).

Distribución. CHILE. Aconcagua; Valparaí-
so; Santiago; Concepción; Valdivia: Estero Es-
tancilla, Corral, Valdivia; Llanquihue: Puerto
Montt; Magallanes; ARGENTINA. Neu-
quén: Lago Curruhue Grande, Correntoso;
Puerto Blest, Lago Hess, Lago Frías, Lago
Nahuel Huapi.

Género TRIAENOMERUS Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 169, 223

40. Triaenomerus olivaceus Roewer, 1913.

Triaenomerus olivaceus Roewer, 1913, 79-A (4):
224; fig. 93; Roewer, 1923, Die Weberk der
Erde, p. 483, fig. 607; Canals, 1935, 39:70;
Soares y Soares, 1949, 7(2): 216; Cekalovié,
1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Valdivia: Valdivia.
(Tipo hembra en la Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Valdivia: Valdivia.

15

Género TUMBESIA Loman, 1889
Zool. Jahrb. Suppl. 4(2): 10

41. Tumbesia aculeata Roewer, 1930.

Tumbesta aculeata Roewer, 1930, 27(3): 358,
fig. 2; Canals, 1935, 39:69; Soares y Soares,
1949, 7(2): 217; Cekalovié, 1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Santiago: Santiago.
(Tipos macho y hembra N* 1327/15, en la
Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Santiago: Santiago.

42. Tumbesia fuliginosa Loman, 1889.

Tumbesta fuliginosa Loman, 1889, 5(2): 10-11,
lám. 1, fig. 9; Soerensen, 1902, 6(5): 24; Lo-
man, 1903; 6(1): 120, 160-161, lám. 10, figs. 3,
12, lám. 11, figs. 14, 18; lám. 12, fig. 27; Roe-
wer, 1913, 79-A (4): 197, fig. 82; Roewer,
1923, Die Weberk der Erde, p. 474, fig. 595;
Roewer, 1930, 27(3): 358; Canals, 1935, 39:
69; Soares y Soares, 1949, 7(2): 217; Cekalo-
vic, 1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Tum-
bes. (Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Concepción: Tumbes,
Pinares.

Material examinado. CHILE. 1 ej. Concep-

ción: Pinares.

Subfamilia CRANAINAE Roewer, 1913

Género PHAREICRANAUS Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 351, 401

43. Phareicranaus giganteus Roewer, 1932.

Phareicranaus giganteus Roewer, 1932, 1(2):
296, 299; fig. 15; Canals, 1935, 39:70; Soares y
Soares, 1948, 5(9): 614; Cekalovié, 1968,
12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Ñuble; Chillán. (Ti-
pos machos y hembra N? 1442/52, en la Colec-
ción Roewer).

Distribución. CHILE. Ñuble. Chillán.

16

Subfamilia PACHYLININAE Roewer, 1913

Género ACANTHOPACHYLUS Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 50

44. Acanthopachylus aculeatus (Kirby), 1819.

Gonyleptes aculeatus Kirby, 1819, 12: 452; Ger-
vais, 1844, 3:105, lám. 46, fig. 2; Butler, 1873,
4(11): 113; Holmberg, 1876, 4: 29.

Faucheur acanthure Dumeril, 1823, p. 60,
figs. 14-16.

Pachylus robustus Holmberg, 1878, 1: 71.

Pachylus aculeatus Soerensen, 1884, 3(14):
641.

Acanthopachylus aculeatus Roewer, 1913-A
(4): 51, figs. 19-20; Roewer, 1923, Die Weberk
der Erde, p. 412, figs. 507-508; Mello-Leitao,
1923, 24: 118, 183; Roewer 1928, 30;B (10): 6;
Roewer, 1929, 27(2): 190; Mello-Leitao, 1932,
17(2): 194; Canals, 1935, 39: 69; Mello-
Leitao; 1939, 17: 623; Canals, 1943, 8(63): 19,
figs. 9a, b, c; Soares, 1944, 4(17): 273; Soares y
Soares, 1954, 8(9): 233; Ringuelet, 1957, 1(1):
21-23; Capocasale, 1964, 6:19-32; Cekalovic,
1968, 12(118): 7; Cekalovié, 1976, 37:24-25;
Drets, M.E., G.A. Folle and A. Aznares, 1982,
102; 159-172, figs. 1-18.

Localidad típica. CHILE. Magallanes: Estre-
cho de Magallanes. (Tipo macho en el British
Museum. Tipo de F. acanthure en el Museum
National d'Histoire Naturelle, Paris. Tipo de
P. aculeatus en el Museo de Viena).

Distribución. CHILE. Magallanes: Estrecho
de Magallanes; ARGENTINA. Misiones (San-
ta María); Río Salado; Buenos Aires (Isla Mar-
tín García, Buenos Aires, Punta Lara); Sierra
Chica; Corrientes; Córdoba (Calamuchita);
Colonia Carlos Pelegriniz URUGUAY. Assun-
cao; Montevideo.

Género ACANTHOPROCTA Loman, 1899
Zool. Jahrb. Suppl. 5: 12

45. Acanthoprocta pustulata Loman, 1899.

Acanthoprocta postulata Loman, 1899, 5(2), 1:
12-13, lám. 1, fig. 10a;b; Soerensen, 1902,
2:34; Roewer, 1913, 79-A (4): 56; figs. 23-24;
Roewer, 1923, Die Weberk der Erde, p. 413,
figs. 511, 513; Roewer, 1929, 27(2): 190; Ca-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

nals, 1935, 39:69; Soares y Soares, 1954, 8(9):
235; Cekalovié, 1968, 12(118): 7; Cekalovic,
1976, 37: 25.

Localidad típica. CHILE. Valdivia: Corral.
(Tipo en el Museo de Berlín).

Distribución. CHILE. Valdivia: Corral; Maga-
llanes: Estrecho de Magallanes,

Género CALCAROGYNDES Mello-Leitao,
1932
Rev. Paulista 17(2): 19, 23, fig. 5.

46. Calcarogyndes calcar (Roewer), 1813.

Metagyndes calcar Roewer, 1913, 79-A (4): 19,
23, fig. 5; Roewer, 1923, Die Weberk der Er-
de, p. 349, 401; Roewer, 1929, 27(2): 188;
Canals, 1935: 39:68.

Calcarogyndes calcar Mello-Leitao, 1932, 17(2):
188; Soares y Soares, 1954, 8(9): 240; Cekalo-
vic, 1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Con-

cepción. (Tipo macho en la Colección Roe-
wer).

Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción.

Género CARAMPANGUE Mello-Leitao, 1937
Rev. Chil. Hist. Nat. 41: 152-153, figs. 14-15

47. Carampangue allermayeri Mello-Leitao,
1945.

Carampangue allermayerr Mello-Leitao, 1945,
17(2): 158-160, fig. 23; Soares y Soares, 1954,
8(9): 241; Cekalovié, 1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Con-
cepción. (Tipos macho y hembra en el Museu
Nacional, Río de Janeiro).

Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción, Pinares, Chiguayante.

Material examinado. CHILE. 1 hembra, Con-
cepción: Pinares, Nov. 4, 1964, T. Cekalovié; 1
hembra, Pinares, Nov. 28, 1964, T. Cekalovié;
7 machos y 1 hembra; Pinares, Mayo 29, 1965,
T. Cekalovié; 2 hembras, Pinares, Oct. 5,

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

1965, P. San Martin; 1 hembra, Concepción,
Oct. 9, 1965, F. Jeldes; 1 macho y 1 hembra,
Quebrada Pinares, Dic. 8, 1968, T. Cekalovié;
1 macho, Chiguayante, Marzo 5, 1969, Bal-
bontín.

48. Carampangue ingens Mello-Leitao, 1937.

Carampangue ingens Mello-Leitao, 1937, 41:
152-154, figs. 14-15; Soares, 1945, 4(9): 370;
Mello-Leitao, 1949, 49:17; Soares y Soares,
1954, 8(9): 242; Cekalovié, 1968, 12(118): 7.

Jighas vastus Roewer, 1943, 26(1-3): 28, lám.
da LV

Localidad típica. CHILE. Arauco: Carampan-
gue. (Tipos macho y hembra en el Museu Na-
cional, Río de Janeiro. Tipo N* 1380/73 de ].
vastus Roewer, 1943, de Cautín: Temuco, en el
Senckenberg Museum).

Distribución. CHILE. Arauco: Carampangue,
Cordillera de Nahuelbuta (Reserva Forestal
Contulmo); Cautín: Temuco.

Material examinado. CHILE. Arauco: 1 ma-
cho Cordillera de Nahuelbuta (Reserva Fores-
tal Contulmo), 410 m. Marzo 18, 1966, H.
Moyano.

49. Carampangue nigronotatum Mello-Leitao,
1943.

Carampangue nigronotatum Mello-Leitao, 1943,
43: 143, fig. 7; Soares y Soares, 1954, 8(9):
242; Cekalovié, 1968, 12(118): 7.

Localidad típica. CHILE. Llanquihue: Mau-
llín. (Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Llanquihue: Maullín.

Género CHILEBALTA Roewer, 1961.
Senk. biol. 42(1-2): 101, figs. 11-12.

50. Chilebalta angulipes Roewer, 1961.

Chilebalta angulipes Roewer, 1961, 42(1-2):
102, lám. 19, figs, 11-12; Cekalovié, 1968,
12(118): 7.

17

Localidad típica. CHILE. Chiloé: Isla de Chi-
loé (Chepu). (Tipo depositado en la Colección
Roewer).

Distribución. CHILE. Chiloé: Isla de Chiloé
(Chepu).

Género CHILEGYNDES Roewer, 1961.
Senck. biol. 42(1-2): 101, fig. 18, fig. 10.

51. Chilegyndes phillipsoni Roewer, 1961.

Chilegyndes phallipson: Roewer, 1961, 42(1-2):
101, lám. 19, fig. 10; Cekalovié, 1968, 12(118):
7; Cekalovic, 1974, 48: 303; Cekalovié, 1976,
MO

Localidad típica. CHILE. Magallanes: Penín-
sula Muñoz Gamero. (Tipo depositado en la
Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Magallanes: Península
Muñoz Gamero; Región Austral.

Género DISCOCYRTUS Holmberg, 1878
El Natural. Arg. 1: 73-74

52. Discocyrtus fazi Piza, 1942.

Discocyrtus fazi Piza, 1942, 2(4): 389-390, fig. 2;
Soares, 1946, 4(13): 515; Soares y Soares,
1954, 8(9): 249; Cekalovié, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Sin indicar locali-
dad. (Tipo hembra N* 695 en el Museu de
Zoología, Universidade de Sao Paulo).

Distribución. CHILE. Sin indicar localidad.

53. Discocyrtus modestus (Gervais), 1847.

Gonyleptes modestus Gervais, 1847, 4: 576; Ger-
vals, 1849, 4:23; Butler, 1873, 4(11): 114; Soe-
rensen, 1902; 2: 30.

Discocyrtus modestus Roewer, 1913, 79-A (4):
120; Roewer, 1923, Die Weberk der Erde, p.
440; Canals, 1935, 39:69; Mello-Leitao, 1939,
17:624; Soares y Soares, 1954, 8(9): 252; Ce-
kalovic, 1968, 12(118): 8; Cekalovié, 1976, 37:
20

Localidad típica. CHILE. Magallanes: Estre-
cho de Magallanes. (Tipo extraviado).

18

Distribución. CHILE. Valdivia: Valdivia; Ma-
gallanes: Estrecho de Magallanes; Patagonia.

Género EUBALTA Roewer, 1923.
Die Weberknechte der Erde, pp. 396, 409.

54. Eubalta meridionalis (Soerensen), 1902.

Balta meridionalis Soerensen, 1902, 2: 22; Roe-
wer, 1913, 79-A (4): 46, figs. 16-17.

Pachylus planiceps Simon, 1884, 9: 141; Si-
mon, 1891, 6(2): 37, lám. 2, fig. 9.

Eubalta meridionalis Roewer, 1923, Die We-
berk. der Erde, p. 410, fig. 504; Roewer, 1929,
27(2): 184; Mello-Leitao, 1932, 17(2): 134,
184; Mello-Leitao, 1935, 36: 99; Canals, 1935,
39: 69; Roewer, 1938, 30-B (10): 6; Mello-
Leitao, 1939, 16: 622; Soares y Soares, 1954,
8(9): 257; Ringuelet, 1959, 5(2): 313-315, fig.
13; Cekalovié, 1968, 12(118): 8; Cekalovié,
1974, 48:306, Cekalovié, 1976, 37:25-26.

Localidad típica. CHILE. Magallanes: Estre-
cho de Magallanes. (Tipo depositado en el
Museo de Berlín).

Distribución. CHILE. Magallanes: Isla Guare-
llo; Canal Smith; Tuesday Bay; Estrecho de
Magallanes; Canal Beagle; Península de
Brunswick (Chorrillo de la Piedra, Río Santa
María, Laguna Parrillar); ARGENTINA. Tie-
rra del Fuego.

Material examinado. CHILE. 4 ejs. Magalla-
nes: Isla Guarello, Mayo 19, 1976, T. Cekalo-
vié; 1 macho, Chorrillo de la Piedra, Octubre
29, 1960, T. Cekalovié; 1 macho, Península de
Brunswick, Laguna Parrillar, Dic., 12, 1965,
T. Cekalovié; 3 ejs. Río Santa María, Enero,
10, 1977, T. Cekalovié.

Género LYCOMEDICUS Roewer, 1923.
Die Weberknechte der Erde, p. 442

55. Lycomedicus asperatus (Gervais), 1847.

Gonyleptes asperatus Gervais, 1847, 4: 577;
Gervais, 1849, 4:26, Atlas Zool. lám. 1, fig. 9;
Butler, 1873, 4(11): 113.

Gonyleptes polycanthoiddes Gervais, 1847, 4:

TE

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 56, 1985.

Gonyleptes subsimilis Gervais, 1849, 4: 25,
Atlas Zool. lám. 1. fig. 8; Butler, 1873, 4(11):
114.

Discocyrtus calcitrosus Loman, 1899, 5(2); 1:
7-8; lám. 1, figs. 5a-b.

Metagyndes subsimilis Canals, 1935, 39: 68.

Lycomedes asperatus Soerensen, 1902, 2: 16-
19; Roewer, 1913, 79-A (4): 127, fig. 57.

Lycomedes calcitrosus Soerensen, 1902, 2: 16-
19.

Sadocus subsimilis Soerensen, 1902, 2: 16-19.

Lycomedicus asperatus Roewer, 1923, Die
Weberk., der Erde, p. 442, fig. 556; Roewer,
1925, 40(34): 17; Roewer, 1929, 27(2): 213;
Mello-Leitao, 1931, 3(2): 84, 92; Canals, 1935,
39: 69; Roewer, 1938, 30-B (10): 6; Mello-
Leitao, 1939, 17: 624; Soares y Soares, 1954,
8(9): 270; Ringuelet, 1959, 5(2): 329: 334, fig.
44; Cekalovic, 1968, 12(118): 8; Soares, 1968,
21(27): 264.

Localidad típica. CHILE. Sin indicar locali-
dad. (Tipos macho y hembra en el Museum
National d'Histoire Naturelle, Paris. Tipo ma-
cho de D. calcitrosus Loman, 1899, de Valdivia:
Corral en el Museo de Hamburgo).

Distribución. CHILE. Aconcagua; Valparaí-
so; Santiago; Concepción: Concepción, Pina-
res; Malleco: Traiguén, Collipulli; Cautín:
Temuco, Villarrica; Valdivia: Corral; Llan-
quihue: Puerto Montt; ARGENTINA. Prov.
Buenos Aires.

Material examinado. CHILE. 1 macho y 3
hembras, Malleco: Collipulli, junio, 28, 1964,
F. Méndez.

56. Lycomedicus bicornis (Gervais), 1849.

Gonyleptes bicorniss Gervais, 1849, 4: 21-22; Bu-
tler, 1873, 4(11): 114.

Lycomedes bicornis Soerensen, 1902, 2: 20;
Roewer, 1913, 79-A (4): 136, fig. 62.

Lycomedicus bicorniss Roewer, 1923, Die We-
berk, der Erde, p. 445, fig. 561; Canals, 1935,
39: 69; Soares y Soares, 1954, 8(9): 270-271;
Cekalovié, 1968, 12(118): 8.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Localidad típica. CHILE. Sin indicar locali-
dad. (Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE.

57. Lycomedicus calcar (Roewer), 1913

Lycomedes calcar Roewer, 1913, 79-A(4): 127,
12 e

Lycomedicus calcar Roewer, 1923, Die Weberk
der Erde, pp. 442, 444, fig. 558; Canals, 1935,
39: 69; Soares y Soares, 1954, 8(9): 271; Ceka-
- lovic, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Con-
cepción. (Tipo macho en la Colección
Roewer).

Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción.

58. Lycomedicus dilatatus (Roewer), 1913

Sadocus dilatatus Roewer, 1913, 79-A(4): 245,
249, fig. 102; Roewer, 1923, Die Weberk, der
Erde, pp. 493, 495, fig. 621; Canals, 1935, 39:
70; Soares y Soares, 1949, 7(2): 211; Cekalo-
vic, 1968, 12(118): 7.

Lycomedicus dilatatus Soares, 1968, 21(27):
264, fig. 12.

Localidad típica. CHILE. Concepción: Con-
cepción. (Tipo macho en la Colección
Roewer).

Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción, Quebrada Pinares.

59. Lycomedicus funestus (Butler), 1876

Gonyleptes funestus Butler, 1876, 12: 153, lám.
8, fig. 5.

Discocyrtus funestus Loman, 1899, 5(2), 1:
6-7.

Lycomedes funestus Soerensen, 1902, 2: 20;
Roewer, 1913, 79-A(4): 127. 130, fig. 58.

Lycomedicus funestus Roewer, 1923, Die We-
berk, der Erde, pp. 442-443, fig. 557; Roewer,
1929, 27(2): 214; Canals, 1935, 39: 69; Soares
y Soares, 1954, 8(9): 271; Cekalovié, 1968,
12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Valdivia: Corral.
(Tipo macho en el British Museum).

19

Distribución. CHILE. Santiago: Santiago;
Valdivia: Corral; ECUADOR. Río Bamba.
Nota del autor. La procedencia señalada por
(Soares y Soares, 1954), para Río Bamba,
Ecuador, es presumiblemente un error de eti-
quetación o de información.

60. Lycomedicus planiceps (Guerin), 1830
Gonyleptes planiceps Guerin, 1830, 3: 13; Ger-
vals, 1842, p. 2; Gervais, 1844, 3: 105; Gervais,
1849, 4: 24, Atlas Zool. lám.1, fig. 10; Butler,
1873, 4(11): 113.

Pachylus planiceps Simon, 1884, 9: 25.

Lycomedes planiceps Soerensen, 1902, 2: 21;
Roewer, 1913, 79-A (4): 127, 134, fig. 60-61.

Lycomedicus planiceps Roewer, 1923, Die We-
berk, der Erde, pp. 442-445, figs. 559-560;
Canals, 1935, 39: 69; Soares y Soares, 1954,
8(9): 271; Cekalovié, 1968, 12(118): 8; Cekalo-
vic, 1974, 37: 26.

Localidad típica. CHILE. Magallanes: Isla
Hoste. (Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Magallanes: Isla Hoste;
Estrecho de Magallanes.

Género METABALTA Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 60

61. Metabalta efformata Roewer, 1929

Metabalta efformata Roewer, 1929, 27(2): 191-
193, fig. 3; Canals, 1935, 39: 69; Soares y
Soares, 1954, 8(9): 273; Cekalovié, 1968,
12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Ñuble: Sierra de
Chillán. (Tipos machos N*” 951-952 en la Co-
lección Roewer).

Distribución. CHILE. Ñuble: Cordillera de
Chillán.

62. Metabalta geniculata Roewer, 1929

Metabalta geniculata Roewer, 1929, 27(2): 191,
fig. 2; Canals, 1935, 39: 69; Soares y Soares,
1954, 8(9): 273; Cekalovié, 12(118): 8.

20

Localidad típica. CHILE. Valparaíso: Valpa-
raíso. (Tipos macho y hembras N* 951-952 en
la Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Valparaíso: Valparaíso.

63. Metabalta hostilis Roewer, 1913

Metabalta hostilias Roewer, 1913, 79-A(4): 61-
63, fig. 29; Roewer, 1923, Die Weberk, der
Erde, pp. 416-417, fig. 519; Roewer, 1929,
27(2): 191; Canals, 1935, 39: 69; Soares y Soa-
res, 1954, 8(9): 273; Cekalovié, 1968, 12(118):
8; Cekalovié, 1974, 48: 306; Cekalovié, 1976,
NZ O

Localidad típica. CHILE. Concepción: Con-
cepción. (Tipo macho en la Colección
Roewer).

Distribución. CHILE. Concepción: Concep-
ción; Pinares; Magallanes: Península de
Brunswick (Río San Juan).

Material examinado. CHILE. Magallanes: 2
machos y 13 hembras, Río San Juan, Febr., 8,
1974, C. Strauss; 1 macho y 3 hembras, Río
San Juan, Febr. 10, 1974, T. Cekalovic; 7 ejs.
Concepción: Pinares, Abril, 24, 1978, K. Et-
cheverry.

64. Metabalta porter Mello-Leitao, 1936

Metabalta porteri Mello-Leitao, 1936, 40: 113,
fig. 10; Soares, 1945, 4(9): 273; Cekalovié,
1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Maule: Constitu-
ción. (Tipos macho y hembra N* 50.221 depo-
sitado en el Museu Nacional, Río de Janeiro).

Distribución. CHILE. Maule: Constitución.

65. Metabalta tuberculata Roewer, 1913

Metabalta tuberculata Roewer, 1913, 79-A (4):
61, figs. 27-28; Roewer, 1923, Die Weberk,
der Erde, p. 416, figs. 517-518; Roewer, 1929,
27(2): 191; Canals, 1935, 39: 69; Soares y Soa-
res, 1954, 8(9): 273; Cekalovié, 1968, 12(118):
8.

Localidad típica. CHILE. Maule: Constitu-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

ción. (Tipos macho y hembra en la Colección
Roewer).

Distribución. CHILE. Maule: Constitución.

Género METAGYNDES Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 18

66. Metagyndes chilensis Roewer, 1943

Metagyndes chilensis Roewer, 1943, 26(1-3): 17,
lám. 1, fig. 3; Soares y Soares, 1954, 8(9): 275;
Cekalovié, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Santiago: Cerro San
Cristóbal. (Tipo macho N* 5384/93 en el Senc-
kenberg Museum).

Distribución. CHILE. Santiago: Cerro San
Cristóbal.

67. Metagyndes innata Roewer, 1929

Metagyndes innata Roewer, 1929, 27(2) 188-
189, fig. 1; Canals, 1935, 39: 68; Soares y
Soares, 1954, 8(9): 275; Cekalovié, 1968,
DA MISI2S:

Localidad típica. CHILE. O'Higgins: Rengo.
(Tipo macho N*? 950/31 en la Colección
Roewer).

Distribución. CHILE. O'Higgins: Rengo.

68. Metagyndes intermedia Roewer, 1913

Metagyndes intermedia Roewer, 1913, 79-A (4):
19, 26, fig. 7; Roewer, 1923, Die Weberk der
Erde, pp. 399-402, fig. 493; Roewer, 1929,
212) 1S8: Canals, TITS SO AOE
Mello-Leitao, 1936, 40: 117; Soares y Soares,
1954, 8(9): 275; Cekalovié, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Valdivia: Valdivia.
(Tipo macho en la Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Valdivia: Valdivia.

69. Metagyndes laevisculata Roewer, 1943

Metagyndes laevisculata Roewer, 1943, 26(1-3):
17, lám. 1, fig. 4; Soares y Soares, 1954,8(9):
275; Cekalovié, 1968, 12(118): 8.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Localidad típica. CHILE. Cautín: Temuco.
(Tipo macho N* 1375/68 en el Senckenberg
Museum).

Distribución. CHILE. Cautín: Temuco.

70. Metagyndes longispina Mello-Leitao, 1936

Metagyndes longispina Mello-Leitao, 1936, 40:
115, fig. 11; Soares, 1945, 4(9): 379; Soares y
Soares, 1954, 8(9): 275; Cekalovic, 1968,
12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Valparaíso: Papu-
do. (lipos macho y hembra N? 50.222 en el
Museu Nacional, Río de Janeiro).

Distribución. CHILE. Valparaíso: Papudo.

71. Metagyndes martensu (Soerensen), 1902

Pachylus martensú Soerensen, 1902, 2: 32.

Metagyndes martensú Roewer, 1913, 79-A
(4): 19, figs. 2-3; Roewer, 1923, Die Weberk
der Erde, p. 399, figs. 488-489; Roewer, 1929,
27(2): 188; Canals, 1935, 39: 68; Mello-Leitao,
1936, 40: 117; Roewer, 1938, 30-B (10): 6;
Mello-Leitao, 1939, 17, 623; Mello-Leitao,
1943, 45: 137; Soares y Soares, 1954, 8(9):
275; Ringuelet, 1959, 5(2): 335-336; Cekalo-
vic, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Llanquihue: Mau-
llín. (Tipos macho y hembra en el Museo de
Berlín).

Distribución. CHILE. Llanquihue: Maullín,
Ensenada; ARGENTINA. Buenos Aires, Pa-
tagonia.

72. Metagyndes pulchella (Loman), 1899

Gyndes pulchellus Loman, 1899, 5(2); 1: 8-9.
Pachylus pulchellus Soerensen, 1902, 2: 34.
Metagyndes pulchella Roewer, 1913, 79-A

(4): 19-21, fig. 4; Roewer, 1923, Die Weberk

der Erde, pp. 399-400, fig. 490; Roewer,

1929, 27(2): 188; Canals, 1934, 5: 6; Canals,

1935, 39: 68; Mello-Leitao, 1936, 40: 117; Me-

llo-Leitao, 1939, 17: 623; Soares y Soares,

1954, 8(9): 275-276; Ringuelet, 1957, 1(1): 23;

Cekalovié, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Valdivia: Corral.

21

(Tipos macho y hembra en el Museo de
Berlín).

Distribución. CHILE. Valparaíso: Valparaíso;
Arauco: Contulmo; Valdivia: Corral; AR-
GENTINA. Río Negro; Neuquén: Nahuel
Huapi, Correntoso, Patagonia.

73. Metagyndes trifidus Mello-Leitao, 1943

Metagyndes trifidus Mello-Leitao, 1943, 45:
141-143, fig. 6; Soares y Soares, 1954, 8(9):
276; Cekalovic, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Llanquihue: Mau-
llín. (Tipo, no se obtuvo información).

Distribución. CHILE. Llanquihue: Maullín.

Género PACHYLUS C.L. Koch, 1839
Ubers. Arach. (2): 12

74. Pachylus acanthops (Gervais), 1849

Gonyleptes acanthops Gervais, 1849, 4: 22-23,
Atlas Zool. lám. 1, fig. 4.

Gonyleptes acanthops Butler, 1873, 4(11):
114.

Pachylus acanthops Soerensen, 1902, 2: 35;
Roewer, 1913, 79-A (4): 40, fig. 14; Roewer,
1923, Die Weberk der Erde, p. 408, fig. 502;
Canals, 1935, 39: 69; Soares y Soares, 1954,
8(9): 283; Cekalovié, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Sin indicar locali-
dad. (Tipo extraviado).

Distribución. CHILE. Sin mayor información.

75. Pachylus chilensis (Gray), 1833

Gonyleptes chilensis Gray, 1833, 5: 13, lám. 20,
fig. 2.

Gonyleptes curvipes Guerin, 1830-1838, 5: 3;
lám. 4, fig. 5; Gervais, 1844, 3: 104, lám. 46,
fig. 1; Gervais, 1849, 4: 20-21, Atlas Zool. lám.
1, figs. 5-6; Butler, 1873, 4(11): 113.

Pachylus granulatus Koch, 1839, 7: 20, fig.
548; Thorell, 1877, 2: 213.

Pachylus chilensis Soerensen, 1884, 3(14):
639: Soerensen, 1895, 10(210): 2; Loman,
1899, 5(2), 1: 9; Soerensen, 1902, 2: 31; Lo-
man, 1903, 6(1): 120, 160-161, figs. B,J,T(C),

22

V(B); lám. 11, fig. 16, lám. 12, fig. 37, lám. 13,
fig. 40; Roewer, 1913, 79-A (4): 36, figs. 11-
19; Porter, 1920, 24(6): 160; Roewer, 1923,
Die Weberk der Erde, p. 406, figs. 499-500;
Roewer, 1929, 27(2): 190; Canals, 1935, 39:
69; Mello-Leitao, 1939, 17: 622; Mello-Leitao,
1943, 45: 137; Soares, 1944, 4(17): 268-269;
Soares, 1945,4(9): 381; Soares, 1946, 4(13):
522; Soares y Soares, 1954, 8(9): 283-284;
Ringuelet, 1959, 5(2): 362-363; Cekalovié,
1968, 12(118): 8; Muñoz, 1969, 41(2): 494;
Muñoz, 1969, 41(6): 1395; Cekalovié, 1976,
AO:

Acanthopachylordes patellaris Piza, 1942, 2(4):
387-388, fig. 1.

Localidad típica. CHILE. Sin indicar locali-
dad. (Tipo de G. chilensis Gray, en el British
Museum. Tipos de G. curvipes Guerin, en el
Museum National d' Histoire Naturelle, Paris.
Tipo de P. granulatus Koch, 1839, en el Museo
de Berlín. Tipo de A. patellaris Piza, 1942, en el
Museu de Zoología, Universidade de Sao
Paulo).

Distribución. CHILE. Aconcagua; Valparaí-
so: Valparaíso, Quilpué, Viña del Mar, Casa-
blanca; Santiago: Santiago; Talca: Talca; Cau-
tín: Temuco; Valdivia: Valdivia; Llanquihue:
Maullín; Magallanes: Estrecho de Magallanes;
ARGENTINA. Buenos Aires; Córdoba; San-
ta Cruz; URUGUAY. Montevideo, Pocillos.

76. Pachylus paessleri Roewer,1913

Pachylus paesslern Roewer, 1913, 79-A(4): 36-
38, fig. 13; Roewer, 1923, Die Weberk der
Erde, pp. 406-407, fig. 501; Roewer, 1929,
27(2): 190; Canals, 1935, 39: 69; Soares, 1945,
4(9): 381; Soares y Soares, 1954, 8(9): 284;
Cekalovié, 1968, 12(118): 8; Muñoz, 1969,
41(2): 494; Muñoz, 1969, 41(6): 1394.

Localidad típica. CHILE. Santiago: Santiago.
(Tipos macho y hembra en el Museo de Ham-
burgo).

Distribución. CHILE. Aconcagua: Cachagua;
Santiago: El Canelo, Santiago, Cerro San Cris-
tóbal, Farellones; Valparaíso: Casablanca;
Valdivia: Valdivia.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

17. Pachylus quanamavidensis Muñoz, 1969

Pachylus quinamavidensis Muñoz, 1969, 41(2):
490-494, figs. 1-28; Muñoz, 1969, 41(6): 1395;
Muñoz, 1971, 42(5): 1027-1035, figs. 1-17;
Muñoz, 1971, 42(6): 1238-1249, figs. 1-54;
Muñoz, 1971, 107(3-4): 468-473, figs. 1-2;
Muñoz, 1971, 12(12): 629-640, figs. 1-7; Mu-
ñoz, 1973, 87(113): 225-233, figs. 1-7; Muñoz,
1973, 128(196): 1517-1537, figs. 1-12, lám.
1-2; Goodnight, M.L. and Goodnight, C.J.,
1976, 95(4): 660, 663.

Localidad típica. CHILE. Linares: Quinamá-
vida. (Tipo, presumiblemente en Museum
National d'Histoire Naturelle, Paris).

Distribución. CHILE. Curicó: Sarmiento;
Talca: Talca; Linares: Quinamávida; Maule:
Tregualemu; Nuble: Salto del Itata; Concep-
ción: Estero San Juan.

Material examinado. CHILE. 3 machos, Curi-
có: Sarmiento, Octubre, 15, 1966, V. Calde-
rón; 1 macho y 3 hembras, Talca: Talca, Sep-
tiembre, 6, 1969, M.T. López; 6 machos y 8
hembras, Maule: Tregualemu, Enero, 13,
1964, H. Moyano; 13 machos y 12 hembras,
Nuble: Salto del Itata, Septiembre, 24, 1969,
R. Donoso; 2 machos y 8 hembras, Concep-
ción: Estero San Juan, Septiembre, 15, 1968,
T. Cekalovic.

78. Pachylus vachon: Muñoz, 1969

Pachylus vachoni Muñoz, 1969, 41(6): 1391-
1394, figs. 1-13.

Localidad típica. CHILE. Aconcagua: Hua-
quén. (Tipo, presumiblemente en el Museum
National d'Histoire Naturelle, Paris).

Distribución. CHILE. Aconcagua: Huaquén;
Santiago: El Canelo; Rinconada Maipú.

Material examinado. CHILE. 3 machos, 11
hembras y 4 juveniles, Santiago: El Canelo,
Noviembre, 17, 1963, O. Fetis; 1 macho, San-
tiago, Mayo, 1964, G. Weighert; 2 machos y 5
hembras, Rinconada Maipú, Noviembre, 7,
1962, S. Meza.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Género PARABALTA Roewer, 1913
Arch. Naturg. 79-A (4): 12, 65.

79. Parabalta cristobalia (Roewer), 1943

Neopucrohella cristobalia Roewer, 1943, 26(1-
3): 24, lám. 2, fig. 14.

Parabalta cristobalia Soares y Soares, 1954,
8(9): 285; Cekalovié, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Santiago: Cerro San
Cristóbal. (Tipo macho N* 5383/92 en el Senc-
kenberg Museum).

Distribución. CHILE. Santiago: Cerro San
Cristóbal.

80. Parabalta reed (Butler), 1876

Gonyleptes reed Butler, 1876, 12: 154, lám. 8
figs. 3-3a.

Lycomedes reed Soerensen, 1902, 2: 21.

Parabalta reedi Roewer, 1913, 79-A (4): 66,
fig. 30; Roewer, 1923, Die Weberk. der Erde,
p. 418, fig. 520; Roewer, 1929, 27(2): 194;
Mello-Leitao, 1932, 17(2): 141; Canals, 1935,
39: 69; Soares y Soares, 1954, 8(9): 285; Ceka-
lovié, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Sin Indicar locali-
dad. (Tipo macho en el British Museum).

Distribución. CHILE. Sin mayor información.

Género PARAPACHYLUS Roewer, 1913.
Arch. Naturg. 79-A (4): 10, 29.

81. Parapachylus bispimfrons Roewer, 1913.

Parapachylus bispimifrons Roewer, 1913, 79-A
(4): 32; Roewer, 1923, Die Weberk. der Erde,
pp. 404-405; Canals, 1935, 39: 69; Soares y
Soares, 1954, 8(9): 288; Cekalovié, 1968,
MAIS):

Localidad típica. CHILE. Valdivia. Corral.
(Tipo en la Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Valdivia: Corral.

23

82. Parapachylus glabrio (Loman), 1899.

Pachylowdes glabrio Loman, 1899, 5(2), 1: 9-10,
lám. 1, figs. 8, 2a.

Pachylus glabrio Roewer, 1913, 79-A (4): 30,
fig. 9; Roewer, 1923, Die Weberk. der Erde, p-
404, fig. 497; Canals, 1935, 39: 69; Soares y
Soares, 1954, 8(9): 288; Cekalovié, 1968,
12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Valparaíso: Quil-
pué. (Tipo hembra en el Museo de Berlín).

Distribución. CHILE. Valparaíso: Quilpué;
Concepción: Concepción.

Género PROGYNDES Roewer, 1916.
Arch. Naturg. 82-A (2): 107.

83. Progyndes crassus (Roewer), 1943.

Pachylordellus crassus Roewer, 1943, 26(1-3):
7 érase De

Progyndes crassus Soares y Soares, 1954,
8(9): 292; Cekalovic, 1968, 12(118): 8.

Localidad típica. CHILE. Santiago: Santiago.
(Tipo macho y hembra N* 1382/75 en el
Senckenberg Museum).

Distribución. CHILE. Santiago: Santiago.

84. Progyndes roeweri (Roewer), 1943.

Gyndulus curuitibialis Roewer, 1943, 26(1-3):
Glam iZ

Progyndes roeweri Soares y Soares, 1954,
8(9): 292; Cekalovié, 1968, 12(118): 9.

Localidad típica. CHILE. Santiago: Santiago.
(Tipo macho N* 1374/67 en el Senckenberg
Museum).

Distribución. CHILE. Santiago: Santiago.

Género PSEUDOGYNDES Mello-Leitao, 1932.
Rev. Mus. Paulista 17(2): 132, 148, 475.

85. Pseudogyndes marginata Roewer, 1961.

Pseudogyndes marginata Roewer, 1961, 42
(1-2): 100-101; Cekalovié, 1968, 12(118): 9.

24

Localidad típica. CHILE. Chiloé: Isla de Chi-
loé (Chepu). (Tipo N* RII/13408/139 en la
Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Chiloé: Isla de Chiloé
(Chepu).

86. Pseudogyndes subsimilis (Roewer), 1913.

Metagyndes subsimilis Roewer, 1913, 79-A (4):
19, 24, fig. 6; Roewer, 1923, Die Weberk. der
Erde, pp. 399-401, fig. 492; Roewer, 1929,
27(2): 188.

Pseudogyndes subsimilas Mello-Leitao, 1932,
17(2): 148, 475; Soares y Soares, 1954, 8(9):
293; Cekalovié, 1968, 12(118): 9.

Localidad típica. CHILE. Llanquihue: Puerto
Montt. (Tipos machos y hembra en la Colec-
ción Roewer).

Distribución. CHILE. Llanquihue: Puerto
Montt.

Género SPINIVUNUS Roewer, 1943.
Senckenbergiana 26(1-3): 24.

87. Spintvunus adumbratus Roewer, 1943.

Spinivunus adumbratus Roewer, 1943, 26(1-3):
24-25, lám. 2, fig. 15; Soares y Soares, 1954,
8(9): 297; Cekalovié, 1968, 12(118): 9.

Localidad típica. CHILE. Sur de Chile, sin
indicar localidad precisa. (Tipo de N* 8202/
115 en el Senckenberg Museum).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Distribución. CHILE. Sur de Chile, sin mayor
información.

Género TEMUCUS Roewer, 1943.
Senckenbergiana 26(1-3): 27.
88. Temucus palpiconus Roewer, 1943.

Temucus palpiconus Roewer, 1943, 26(1-3): 27-
28, lám. 2. fig. 21; Soares y Soares, 1954, 8(9):
298; Cekalovié, 1968, 12(118): 9.

Localidad típica. CHILE. Cautín: Temuco.
(Tipo macho N” 1381/74 en el Senckenberg
Museum).

Distribución. CHILE. Cautín: Temuco.

Subfamilia PHAREINAE Roewer, 1929.

Género NANOPHAREUS Roewer, 1929.
Abr. Nat. Verh. Bremen 27(2)

89. Nanophareus palpalis Roewer, 1929.

Nanophareus palpalis Roewer, 1929, 27(2),
Canals, 1935, 39:69; Cekalovié, 1968,
12 (11S) 9

Localidad típica. CHILE. Sin indicar locali-
dad. (Tipo en la Colección Roewer).

Distribución. CHILE. Sin mayor información.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

COORDENADAS DE LOS LUGARES GEOGRAFICOS

Agua de la Gloria (lugarejo)
Cachagua (fundo)

Caracol (cerro)
Carampangue

Casablanca

Cauquenes

Chaimavida (estero)

Chepu

Chiguayante

Chillán

Chorrillo de la Piedra (estero)

Coipué

Collipulli

Concepción

Corral

Contulmo

Cordillera Chillán

El Canelo

El Ganso (río)
Estancilla (estero)
Estrecho de Magallanes
Farellones

Florida

Guarello (isla)

Henry (caleta)

Hoste (isla)

. Huaquén

Hualpén (parque)
Iquique

Las Escaleras

Lastarria (cuesta)

Lebu

Macul (quebrada)
Maullín

Muñoz Gamero (península)
Nahuelbuta (cordillera)
Navarino (isla)
Nonguén (estero)
Nueva (isla)

DE CAPTURA DE OPILIONES

36%53'S;
32%35'S;
36%50'S;
37%15'S;
33%19'S;
35%58'S;
36%53'S;
42%23'S;
36%54"S;
36%36'S;
53%10'S;
38%11'S;
37%53'S;
36%50'S;
39%53'S;
382028;
36%54'S;
33%44'S;
53%10'S;
39%50'S;
53%00'S;
33%21'S;
36%49'S;
50%23'S;
50%00'S;
55%10'S;
32%18'S;
36%46'S;
20%12'S;
36%11'S;
39%14"S;
ILDISE
3330'S;
41%37'S;
52%30'S;
37%47'S;
5510'S;
36%52'S;
DOSIS:

EN CHILE
72254 W. Papudo
719227 W. Parrillar (laguna)
7302'W. Penco
73214 W. Pinares (quebrada)
71925'W. Pitrufquén
7220'W. Punta Arenas
72254W. Puerto Aysen
73-38 W. Puerto Edén
73-00'W. Puerto del Hambre
72206 W. Puerto Montt
71202W. Puerto Pantalón
172227W. Puerto Williams
72226'W. Puerto Toro
73202'W. Putabla
120 We Quilpué
7313'W. Quinamávida
71932 W. Rengo
70227'W. Reserva Forestal Contulmo
71923'W. Rinconada Maipú
73218'W. Río Bueno
70%40'W. Salto del Itata
70220"W. Santiago
72241 W. San Cristóbal (cerro)
75-20". San Juan (estero)
UNEN San Juan (río)
69-20'W. Santa María (río)
719228 W. San Pedro (cerros de)
7312 W. San Vicente
70210'W. Sarmiento (Est. de FF.CC.)
7346 W. Sentry Boxes (cerro)
72240'W. Talca
7340'W. Temuco
72230'W. Traiguén
TSE Tregualemu
73200'W. Tumbes
73200'W. Valdivia
6730'W. Valparaíso
72258 W. Villarrica
6635'W. Viña del Mar

32%30'S;
53%24"S;
36%44"S;
3650'S;
38%59'S;
DISIO'S;
4DRID;S;
4908'S;
53%39'S;
4128'S;
5456'S;
5456'S;
55%05'S;
3938'S;
33%04'S;
354 7'S;
349248;
38%02'S;
33232'S;
40%16'S;
3640'S;
33227'S;
IÍNZOO;
36%50'S;
AS
53%4 1"S;
422248;
3645'S;
34%56'S;
DDRÍDIS;
35-26'S;
38%45'S;
38%15'S;
35%59'S;
3639'S;
39%49'S;
33%03'S;
3920'S;
IIZULS;

25

71930'W.
711915W.
71200'W.
73204 W.
7238 W.
70054 W.
72243 W.
714225'W.
70%55'W.
72%56'W.
6730".
67%38'W.
67%04'W.
73202 W.
71928'W.
7124 W.
7052 W.
73213 W.
70%46'W.
72240 'W.
72227W.
70%40'W.
70%38'W.
73918W.
71200".
70%58'W.
74200".
73210'W.
719212 W.
6806'W.
71%40'W.
EDI
72%40'W.
72246 'W.
73-06'W.
7316'W.
71938 W.
72%08'W.
71235W.

26

Suborden

Cyphophthalmes
Palpatores

Laniatores

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 56, 1985.

CUADRO RESUMEN DE FAMILIAS,

GENEROS Y ESPECIES DE LOS OPILIONES

Familia

Sironidae

CHILENOS

Acropsopilionidae
Neopilionidae

Triaenonychidae

Gonyleptidae

Género

Chileogovea
Acropsopilio
Thrasychirus
Holcobunus
Prionostema
Phalangium
Americobunus
Araucanobunus
Chilenuncia
Diasa

Nuncia
Parattaha
Triaenonyx
Triaenonychordes
Arauconoleptes
Corrala
Diconospelta
Eugonyleptes
Fonckia
Neogonyleptes
Sadocus
Triaenomerus
Tumbesta
Phareiwcranaus
Acanthopachylus
Acantroprocta
Calcarogyndes
Carampangue
Chilebalta
Chilegyndes
Discocyrtus
Eubalta
Lycomedicus
Metabalta
Metagyndes
Pachylus
Parabalta
Parapachylus
Progyndes
Pseudogyndes
Spinivunus
Temucus
Nanophareus

43

N2
l
2
3
l
4
]
l
l
l
l
l
l
6
l
l
]
]
l
l
6
3
l
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]
]
l
l
3
l
l
2
l
l
5
8
5
Z
2
2
2
l
l
l

89

de especies

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ESTUDIO PARASITOLOGICO DE MERLUCCIUS AUSTRALIS
(HUTTON, 1872) (PISCES: MERLUCCIDAE):
ASPECTOS SISTEMATICOS, ESTADISTICOS Y ZOOGEOGRAFICOS.

A parasitological study of Merluccius australis
(Hutton, 1872)(Pisces: Merluccidae):
Systematic, statistical and zoogeographic aspects.

JACQUELINE FERNANDEZ B.*

RESUMEN

Se estudiaron los parásitos de 100 ejemplares de Merluc-
ctus australis (Hutton, 1872) provenientes de Isla Guafo
(437 36' S; 74” 43' O), encontrando 13 especies de parási-
tos pertenecientes a 4 phyla distintos. Copépoda: Trifur
puntamiger, Thomé, 1963; Chondracanthus paltafer Wilson,
1912; Neobrachiella insidiosa f. lageniformis Kabata, 1979;
Monogenea: Anthocotyle merlucci (Van Beneden and Hesse,
1863); Digenea: Aporocotyle sp. y Derogenes varicus (Muller,
1784); Cestoda: Clestobothrium crassiceps Rudolphi, 1819;
Hepatoxilon trichiur: (Holton, 1802) (post-larva); Grillotia
heptanchi (Vaullegeard, 1899) (plerocercoide), Scolex pleu-
ronectis Muller, 1788 y estados larvales no identificados;
Nemátoda: Anasakis sp. (larva); Hysterothylacium sp. (larvas
y adultos); Acanthocephala: Corynosoma sp. (acantelas).

Para cada uno de estos parásitos se realizó un análisis
estadístico simple para determinar prevalencia, intensi-
dad, rango, correlación y parasitismo diferencial entre
machos y hembras del hospedador, así como para obser-
var variación de algunos parásitos con la talla del pez.

Se discute, además, la presencia de ciertos parásitos
usados como indicadores zoogeográficos, postulándose
un origen atlántico para Merluccius australis, a diferencia
del origen pacífico de Merluccius gay:.

INTRODUCCION

El género Merluccius en el Pacífico Sur Orien-
tal está representado por dos especies, Merluc-

*Depto. Zoología. Casilla 2407. Universidad de Concep-
ción. Concepción, Chile.

ABSTRACT

One hundred specimens of Merluccius australis (Hutton,
1872) from Guafo Island (43% 36' S; 74” 43' O), were
studied. The following parasites belonging to 13 speciesin
4 phyla were found on the specimens studied: Copepoda:
Trifur puntaniger Thomé, 1963; Chondracanthus palpifer
Wilson, 1912 and Neobrachiella insidiosa f. lageniformis Ka-
bata, 1979; Monogenea: Anthocotyle merlucci (Van Bene-
den and Hesse, 1863); Digenea: Aporocotyle sp. and Deroge-
nes varicus (Muller, 1784); Cestoda: Clestobothrium crassi-
ceps Rudolphi, 1819; Hepatoxilon trichiur: (Holton, 1802)
(post-larvae); Grillotia heptanchi (Vaullegeard, 1899) (ple-
rocercoid); Scolex pleuronectis Muller, 1788 and several
larval stages unidentified; Nematoda: Anisakas sp. (larvae),
Hysterothylacium sp. (larvae and adults); Acanthocephala:
Corynosoma sp. (acanthella).

For each of the parasite species, a simple statistical
analysis was made to determine prevalence, intensity, ran-
ge, correlation and differential parasitism between male
and female hosts. Variability of parasites with host size is
discussed.

The use of parasites as zoogeographic indicators is
discussed. The Atlantic origin of Merluccius australis is
suggested in opposition to the Pacific origin of Merluccius
gay.

Keywords: Fish parasites. Merluccius australis. South-
eastern Pacific. Taxonomy. Zoogeography.

ctus gay? y M. australis. Esta última presenta dos
poblaciones, una en Nueva Zelandia y otra
Patagónica, que se distribuye entre los 4098 y
57%S en Chile, y entre los 499%S y 55%S en la
costa argentina (Inada, 1981). Para Chile, M.
australis constituye un importante recurso pes-

IZ

quero, explotado principalmente por buques
factoría, y que llega a conformar el 45,9% de la
biomasa total de recursos demersales entre los
5298 y 57%S (Avilés y Aguayo, 1977).

Desde un punto de vista parasitológico, M.
gay, se puede considerar estudiada (Carvajal
et al., 1979 a; Kabata y Ho, 1981), pero el
estudio de los parásitos de M. australis es esca-
so, ya que de éstos, se conocen sólo dos larvas
de cestodes, Grillotia heptanchi (Carvajal y
Campbell, 1979) y Hepatoxilon trichiur: (Tagle,
1951); un nemátodo, Anisakas sp. (Menezes y
Lima, 1980) y el copépodo Sphyrion king:
(Atria, 1977).

La necesidad de completar este estudio se
basa en la importancia de este recurso pesque-
ro y en la necesidad de conocer a futuro los
efectos de los parásitos sobre la biomasa de
éste u Otro recurso, ya sea como regulador
biológico de la población o como inhibidor del
desarrollo individual. Además constituye un
aporte al conocimiento de los parásitos del
género Merluccius en el mundo, con su respec-
tiva implicancia en el desarrollo de las teorías
zoogeográficas referentes a su origen y dis-
persión.

MATERIALES Y METODOS

Durante enero de 1982 se recolectaron 100
ejemplares de M. australis en la planta de la
Pesquera Eicomar Ltda., los cuales provenían
de un barco de arrastre que operaba a la cua-
dra de Isla Guafo (43%36'S; 74%43'0). Todos
los ejemplares fueron numerados, medidos
(longitud total), pesados y sexados por exa-
men de las gónadas.

Se examinó el tegumento, aletas, bran-
quias, vísceras, cavidad celómica y musculatu-
ra, cuantificando los parásitos encontrados. El
examen de branquias incluyó arterias y fila-
mentos branquiales; las vísceras se revisaron
externa e internamente; la mucosa y submu-
cosa intestinal fue separada y el contenido es-
tomacal e intestinal fue examinado en detalle.
Bacterias, virus, hongos y protozoos no fue-
ron considerados.

Todos los parásitos fueron fijados en for-
malina al 7% y traspasados posteriormente a

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

alcohol etílico al 70%. Algunos monogeneos,
digeneos, cestodes y acantocéfalos fueron te-
ñidos con Carmín acético de Semichon o He-
matoxilina Delafield y montados en Bálsamo
de Canadá o Gelatina-Glicerina. Los nemáto-
dos fueron diafanizados con lactofenol de
Aman.

En la identificación del material obtenido se
siguieron los criterios utilizados por Deardoff
y Overstreet, 1980 y Smith y Wooten, 1978
para nemátodos; Wilson, 1917 y Ho, 1970
para copépodos; Yamaguti, 1971 para dige-
neos; Yamaguti, 1961 para monogeneos; Pe-
trochenko, 1971 para acantocéfalos y por últi-
mo Dollfus, 1942 y Yamaguti, 1959 para ces-
todes.

A cada especie de parásitos se le calculó el
porcentaje de infección (= prevalencia), in-
tensidad y rango, considerando el total y, pos-
teriormente, machos y hembras por separado.
Se aplicó un test X? para docimar la diferencia
en el porcentaje de infección entre machos y
hembras, y un test t-student para las diferen-
cias en intensidad.

Se calculó además, para cada parásito, el
coeficiente de correlación (R) entre el número
de parásitos y la talla del pez. Para los casos en
que fue significativo, se efectuó una regresión
lineal simple para obtener la correspondiente
ecuación de la recta. Para dichos cálculos se
utilizó el programa P4-B-12 de una minicom-
putadora Sharp PC-1211.

Finalmente, se realizaron gráficas para Ca-
da parásito con curvas de prevalencia e inten-
sidad versus la talla del hospedador, con el fin
de observar cambios en los parámetros según
el tamaño del pez. Para estos efectos se dividió
a los peces en 6 grupos según su talla, con
intervalos de 6 cm. El número de clases, rango
de las tallas y número de peces por clase, se
exponen en la tabla 1.

Porcentaje de infección o prevalencia, es el
porcentaje de hospedadores infectados con
un determinado parásito; intensidad es el nú-
mero promedio de parásitos por pez infectado
en una muestra y rango es el número máximo
y mínimo de parásitos en un hospedador o
conjunto definido de ellos.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Tabla 1
Clases en que fueron agrupados los
100 ejemplares de Merluccius australis
con sus respectivos rangos de talla
y número de peces de cada una de ellas

Clase Talla N?* de peces
(cm) por clase (N)

1 58-64 24

2 65-71 46

3 72-78 15

4 79-85 8

5 86-92 3

6 93-99 4

RESULTADOS

En las 100 merluzas muestreadas, los rangos
de talla fluctuaron entre 58 y 98 cm, con una
media de 70 cm y una desviación éstandar de
8,72, mientras que los pesos fluctuaron entre
1140 y 7140 gr con una media de 2325 gr y
una desviación éstandar de 1112,95. De las
100 muestras, 51 eran machos y 49 hembras,
siendo no significativa la diferencia (P<0.05).

Los parásitos encontrados, su localización,
porcentaje de infección, intensidad y rango se
indican en la tabla 11. Las más altas prevalen-
cias e intensidades corresponden a los nemá-
todos Anisakis sp. e Hysterothylacium sp. (larvas
y adultos), al cestode Clestobothrzum crassiceps y
al digeneo Aporocotyle sp., el resto de los parási-
tos presentan prevalencias inferiores al 50%,
con intensidades menores que 5.

Entre los copépodos, C. palfafer es el que
presenta la mayor prevalencia e intensidad,
encontrándose hasta 14 individuos en un solo
ejemplar de M. australis.

En el grupo de los tremátodos, la prevalen-
cia de A. merlucci y Aporocotyle sp. es compa-
rable (43% y 42% respectivamente), pero este
último presenta una intensidad mayor (14)
hallándose hasta 31 individuos en un solo pez.
De los cestodes encontrados, C. crassiceps es el
de mayor prevalencia e intensidad, encon-
trándose hasta 110 individuos en un solo pez.

33

Considerando el sexo de M. australis como
factor influyente sobre ciertos parámetros pa-
rasitológicos, se observa una prevalencia signi-
ficativamente mayor en las hembras que en los
machos parasitados por HA. trichiuri y Coryno-
soma sp. Contrariamente, la prevalencia de
Hysterothylacium sp.(larvas) es significativa-
mente mayor en los machos que en las hem-
bras. En relación a los valores de intensidad,
estos son significativamente mayores en las
hembras que en los machos para la infección
por Corynosoma sp. y Anisakas sp. (tabla III).

La prevalencia e intensidad de los diferen-:
tes parásitos está estrechamente relacionada
con la longitud del hospedador como lo mues-
tra la figura 1. Los copépodos Trifur puntan:-
ger y N. insidiosa f. lagenaformis, se encontrarían
solamente en las tallas inferiores, mientras
que C. palpifer es relativamente constante tan-
to en prevalencia como en intensidad a lo lar-
go de todas las tallas. Aporocotyle sp. tiende a
disminuir su prevalencia y aumentar la inten-
sidad en los peces mayores. H. trichiuri, C.
crassiceps y G. heptanchi, aumentan tanto la pre-
valencia como la intensidad junto con la talla
del pez. Hysterothylacium sp. y Anisakas sp. pre-
sentan una prevalencia máxima a lo largo de
todas las tallas, tendiendo a aumentar la inten-
sidad junto con la talla del pez. En las restantes
especies la relación no es tan aparente. Estos
gráficos indican principalmente tendencias y
no deben ser considerados puntualmente, ya
que algunas de las clases, el número de peces
que las componen es relativamente bajo, como
se ve en la tabla 1.

De los parásitos encontrados en M. australis,
4 presentan una correlación significativa.
(P<0,01) entre la longitud del pez y el número
de parásitos. Las especies en cuestión son: C.
crassiceps (R= 0,4; y -50 + 0,92X); H. trichuur
(R= 0,61; y = -8,6 = 0,13Xx); G. heptanchi (R=
0,336; y = -14 + 0,023Xx) y Ansakis sp. (R=
0,64; y = -804 + 12,5x).

DISCUSION
Taxonomía y Cuantificación

De las cuatro especies citadas en la literatura
como parásitos de M. australis (Atria, 1977;
Carvajal y Campbell, 1979; Menezes y Lima,

34 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Tabla II
Localización, porcentaje de infección, intensidad y rango de cada uno de
los parásitos encontrados en Merluccius australis (Hutton, 1872).

Parásito Localización % Infección Intensidad Rango
COPEPODA
Trifur puntaniger Ectoparásito 11 1,4 1-3
Thomé, 1963 musculatura
Neobrachtella imsidiosa Filamentos 18 3,1 1-14
f. lageniformis Kabata, 1979 branquiales
Chondracanthus palpifer Mucosa bucal, 30 3,2 1-14
Wilson, 1912 arcos branquiales
MONOGENEA
Anthocotyle merlucci Filamentos 43 2,6 1-8
Van Beneden €: Hesse, 1863 branquiales
DIGENEA
Aporocotyle sp. Cono arterial, 82 14 1-35
aorta, vasos
sanguíneos
Derogenes varicus Intestino ac pd dul

(Muller, 1784)

CESTODA

Clestobothrium crassiceps Intestino 95 15,2 1-110

Rudolphi, 1819

Hepatoxylon trichiuri Celoma 34 2 1-12

(Holton, 1802)

Grillotia heptanchi Mesenterios, 16 165 lá:

(Vaullegeard, 1899) musculatura

Larvas n/id. Mesenterios, 35 1,5 e?
musculatura

Scolex pleuronectis Intestino — =- =$

Muller, 1788

NEMATODA

Anisakas Sp. Mesenterios 100 69,1 1-980

Hysterothylacium sp. Intestino 94 60,3 1-260

Hysterothylacium sp. Mesenterios 64 20 1-13

(larva)

Contracaecum sp. Mesentarios 17 22 SU).

ACANTHOCEPHALA

Corynosoma sp. Mesenterios 14 64163 1-3

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 35

Tabla II
Porcentaje de infección, intensidad y rango para machos y hembras de
Merluccius australis por separado, con sus correspondientes valores calculados
de X? y t-test (Zc) para los dos primeros parámetros

HEMBRAS MACHOS
N? 49 N? 51
% Intensidad % de Intensidad X?*(%) Zc. (Int.)
Infección (rango) Infección (rango)
T. puntaniger 7 1 4 1,8 1,90 1,81
(1) (1-3)
N. insidiosa 10 3.6 8 2,5 0,61 0,80
f. lagen2formis (1-14) (1-6)
C. palpifer 14 3,3 16 3,1 0,13 0,34
(1-14) (1-12)
A. merlucci 22 216 21 2,5 0,16 0,20
(1-8) (1-8)
Aporocotyle sp. 41 6,8 41 AOS ORO
(1-31) (1-35)
C. crassiceps 47 19,2 48 LLS 0017 0/46
(1-110) (1-90)
H. trichun 21 2,6 14 2 441 * 0,50
(1-11) (1-12)
G. heptanchi 7 1,6 9 1,3 0,35 0,53
(1-4) (1-3)
Corynosoma sp. 11 1,6 3 l E E
(a) (1)
Hysterothylacium sp. 17 60,6 47 ADOOS 02
(1-169) (1-260)
Contracaecum sp. 7 2,3 10 ZO 0,072
(1-7) (1-11)
Hysterothylacium sp. 25 3,4 39 2,8 DU 2 000
(larva) (1-11) (1-13)
Amisakas sp. 49 107,4 51 30,7 00 2,26 *
(1-980) (1-354)

*: Valor significativo al 0,05%.

36 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

“lo itur puntaniger “lo N. insídiosa f lagenitormis

ÁS
ño) 2
O
(9) UD
A ES
CAS (0)
(E £
o (0D)
Cd
6 E
TU .—
o
PA)
oo o illoti t Í
150 - 106 Grillotia heptanchi 5
80 E
5
60 h
40 DS
o 2
o 1
.0d Larvas n/i 5 130 Corynosoma Sp. 5

australis (Hutton, 1872). _————:% de infección; ------- : intensidad. (Las tallas correspondientes a las diferentes
clases de edad se indican en la tabla 1).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

(Continuación Fig. 1)
Anisakis sp.

%
100

80

60

40

20

% de infección

Tamaño del

1980; Tagle, 1951), sólo se constató la presen-
cia de tres de ellos: A. trichiuri, G. heptanchi y
Anisakas sp. En la literatura se cita la presencia
de Sphiryon kingi en Merluccius polylepis (=M.
australis) proveniente de Isla Guafo, el mismo
lugar en que se realizó este estudio. Su real
presencia se cuestiona, ya que en el transcurso
del muestreo fue posible revisar externamen-
te unos 3000 ejemplares de M. australis, no
siendo encontrados en éstos, pero sí en con-

grios dorados (Genypterus blacodes) provenien-

tes de la misma área.

Del total de especies encontradas, T. punta-
niger, N. imsidiosa f. lageniformis, A. merlucca,
Aporocotyle sp. y Derogenes varicus constituyen
el primer registro para Chile.

Ninguno de los parásitos encontrados ha-
bía sido cuantificado con anterioridad, por lo
cual, los encontrados en M. australis sólo pue-
den ser comparados con los de otros peces.

Thulin, 1980, señala la presencia de Aporo-
cotyle simplex en Hippoglossordes platessoides, Li-
manda limanda y Pleuronectes platessa, con una

37

Contracaecum sp. 5

Intensidad

1 2 3 h 5 6

pez (clases)

prevalencia y rango de 98% y 1-49; 27% y
1-12; 13% y 2-19, respectivamente. Durán y
Oliva (1980) encuentran 2 ejemplares de Apo-
rocotyle sp. en un solo ejemplar de Merluccius
gay peruanus de un total de 140 que fueron
examinados. Los valores encontrados en M.
australis, 82% y 1-45, son sólo comparables a
los encontrados por Thulin (1980) en H. pla-
tessordes.

Para A. americanus, Durán y Oliva (1980)
encuentran una prevalencia de 4,6 con inten-
sidad 1 en M. gay: peruanus, siendo los valores
de M. australis mucho más elevados (43% y
ZO)

Un 16% de la muestra de M. australis se
encontraba parasitada por Grillotra heptancha.
Carvajal et al. (19792) encuentran que un
16,6% de su muestra de M. gayi está parasitada
con Grillotia dollfus: en la zona central de Chile,
siendo comparables ambos valores. Por otra
parte, la presencia de este plerocercoide en M.
australis indicaría que ésta puede (potencial-
mente) formar parte de la dieta de Hexanchus

38

griseus, hospedador definitivo de éste parásito.
Los mismos autores, para Clestobothrium sp.
de M. gayi, indican una prevalencia de sólo
6,6% con intensidad de 2,6 y rango 1-7. Durán
y Oliva, Op. cit., para Clestobothrium crassiceps
en M. gayi peruanus indican una prevalencia de
28,6 con una intensidad de 2,5. Los valores
encontrados en M. australis, 95%, 15,2 y 1-110,
son muy superiores a los anteriores, por lo
cual, la alimentación, diferente entre ambas
especies de Merluccius, debe ser un factor de
primer orden en la adquisición de los diferen-
tes parásitos.

Comparando los valores de prevalencia e
intensidad de M. australis para Anisakis sp.
(100%, 69 y 1-980) con los dados por Carvajal
et al., op. cit., para M. gay: (86,6%, 11,1 y 1-73)
se observa una marcada diferencia, principal-
mente con relación a la intensidad y rango.
Esto puede deberse a una acumulación cre-
ciente de estos vermes, tanto por adquisición
de ellos desde sus primeros hospedadores
(crustáceos) como desde otros hospedadores
intermediarios, siendo entonces un hospeda-
dor paraténico para este parásito (Smith y
Wooten, 1978). Esto es probable, ya que alre-
dedor del 90% de las merluzas examinadas
tenía ejemplares de Macruronus magellanicus
en su contenido estomacal, la cual también
está parasitada por larvas de Anisakis sp.
(George Nascimento y Carvajal, 1980). A lo
anterior se añaden los hallazgos de larvas de
Thynnascaris sp. (probablemente Hysterothyla-
ctum sp.) e Hysterothylacium sp. en Macruronus
magellanicus (Torres et al., 1979; Ortiz y Geor-
ges Nascimento, 1982, com. pers., respectiva-
mente), que podrían explicar la alta prevalen-
cia e intensidad de adultos de Aysterothylacium
sp. en M. australis (94% y 60,3), pudiendo am-
bos peces formar parte del ciclo de vida de este
nemátodo.

Las diferencias encontradas en las preva-
lencias e intensidades de infección entre ma-
chos y hembras de M. australis para H. trichiura,
Corynosoma sp., Hysterothylacium sp. y Anisakas
sp. no pueden ser debidas a diferencias en la
composición por tallas de la muestra, ya que
éstas no son significativamente distintas. Va-
rios autores han postulado que el sexo del

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

hospedador sería un factor determinante e
influyente sobre las parasitosis de peces y ma-
míferos (Esch et al., 1977; Seidenberg et al.,
1974); algunas de las explicaciones propuestas
se basan en las diferencias en la composición
de la dieta entre machos y hembras, común en
muchas especies, el comportamiento diferen-
cial y la resistencia fisiológica entre sexos
(Kennedy, 1970). Puede ser que algunos de
estos factores y otro desconocido sean las cau-
sales de esta diferencia.

La distribución diferencial de la prevalen-
cia e intensidad según la talla del pez, en el
sentido de un aumento continuo o un máximo
constante como en Aysterothylacium sp. Anisakas
sp., C. crassiceps y H. trichiuri, es comprensible
considerando que los estados larvales como
Anisakas sp. y H. trichiuri, mo pueden escapar
del hospedador por sí solos, tendiendo a acu-
mularse con el transcurso del tiempo debido a
las sucesivas infecciones. Por otra parte, para
el caso de Hysterothylacium sp. y C. crassiceps,
ambos estados adultos y que coexisten espacial
y temporalmente en el pez, hay que conside-
rar, además de las infecciones constantes del
pez a través de su dieta, factores tales como el
promedio de vida de estos parásitos (Kenne-
dy, 1970, 1975), que aparentemente debe ser
relativamente largo para ambos.

En relación a la ausencia de T. puntamiger y
N. imsidiosa f. lageniformis en las clases superio-
res, para el primero se supone una acción
mecánica de desprendimiento, en que por ro-
ce contra objetos duros o por necrosis y pérdi-
da de una pequeña sección muscular (con su
posterior regeneración) podría el pez liberar-
se de dicho parásito. En el caso de Neobrachte-
lla, se supone un mecanismo semejante al exis-
tente en las especies de Clavella, ambas se-
mejantes en su morfología. Existe evidencia
de que Clavella tiene un corto período de vida
(Shotter, 1973) y los peces deben estar cons-
tantemente reinfectándose para mantener la
población de Clavella. Por otra parte, los cope-
poditos son más propensos a la fijación en
peces jóvenes que maduros, lo cual podría ser
el resultado de una respuesta inmunológica o
de un incremento de la corriente respiratoria
del pez (Shotter, 1973) lo cual estaría dificul-
tando mecánicamente la fijación.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

39

Fig. 2. Teoría postulada por Kabata y Ho (1981) sobre el origen y dispersión del género Merluccius. Las especies
consideradas son: 1. M. Merluccius; 2. M. polli; 3. M. senegalensis; 4. M. capensis; 5. M. paradoxus; 6. M. bilineris; 7. M. albidus;
8. M. hubbsi, 9. M. gayi; 10. M. angustimanus; 11. M. productus; 12. M. australis.

Aspectos z00geográficos

El género Merluccius es objeto de una continua
e intensa pesca en la mayoría de las regiones
donde existe, por lo cual ha atraido considera-
blemente la atención de muchos investigado-
res. Es así como uno de los puntos que se ha
tratado dentro del conocimiento científico, es
el centro de origen y posibles rutas de disper-
sión de dicho género. En la actualidad este

problema se enfoca con dos criterios diferen- '

tes, uno basado en estudios ictiológicos (Sveto-
vidov, 1948; Inada, 1981) y otro en estudios
parasitológicos (Szidat, 1955; Kabata y Ho,
1981), siendo ambos apoyados por las eviden-
cias paleontológicas.

El problema enfocado a través de los parási-
tos, se fundamenta en el hecho de que los
animales son acompañados en sus migracio-
nes por sus parásitos, de manera que la coloni-
zación de nuevas áreas puede significar la pér-
dida de los parásitos iniciales y/o la adquisición

de nuevas especies, ya sea por especiación de
los originales o por transferencia de nuevas
formas desde otros peces (Kabata y Ho, 1981).
En este punto hay que considerar, sin embar-
go, que no todos los parásitos pueden ser usa-
dos para estos fines (aspectos zoogeográficos
del hospedador) ya que la especificidad es uno
de los requisitos fundamentales.

Con respecto a Merluccius, Kabata y Ho, op.
cit., señalan que sólo 5 de todos los copépodos
presentes en Merluccius le son estrictamente
específicos (v.g. Chondracanthus merluccia, C.
palpaifer, Neobrachiella insidiosa, N. merluccn y
Clavella stellata). El resto de los parásitos no
presentan condiciones como para ser «unside-
rados especies indicadoras.

La comparación de los parásitos de M. aus-
tralis de la costa sur de Chile con M. gay: de la
costa centronorte, evidencia importantes dife-
rencias, especialmente en aquellas especies
utilizadas como indicadores zoogeográficos, lo

40

Fig. 3. Posible origen y dispersión de las especies de Mer-
luccius del cono sur de América en base a los parásitos
encontrados en M. australis (Hutton, 1872). Las especies
indicadas son: 1. M. albidus; 2. M. hubbsi, 3a. M. australis,
población Patagónica; 3b. M. australis, población Neoze-
landesa; 4. M. gay; 5. M. angustimanas.

cual sugiere un origen evolutivo distinto para
ambas especies. Sin embargo, los parásitos de
M. australis, coinciden con lo señalado para M.
hubbsi del Atlántico argentino. La presencia de
N. imsidiosa f. lageniformis y C. palpafer en Mer-
luccius australis, ambas formas atlánticas, indi-
carían un origen atlántico para esta especie.

Esta hipótesis difiere de lo postulado por
Inada (1981), quien señala un origen pacífico
para M. australis y M. hubbsi, se contrapone

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

además a lo planteado por Szidat (1955),
quien señala el Pacífico Norte como centro de
origen del género Merluccius, infiriendo un
origen Pacífico para M. hubbsi, y, por último, la
presente hipótesis coincide con lo señalado
por Kabata y Ho (1981) respecto a las rutas de
dispersión de las especies de Merluccius del
cono sur de América por ellos conocidas, M.
gay: y M. hubbsi. Cabe mencionar que estos
autores desconocen la presencia de una pobla-
ción de Merluccius australis (=M. polylepis) en la
costa sur de Chile, y suponen que la distribu-
ción de las otras dos especies (M. gayi y M.
hubbs1) llega “hasta el extremo del continente”,
señalando a M. hubbsi como posible ancestro
de M. australis de Nueva Zelandia (Fig. 2).

Con los datos obtenidos en el presente estu-
dio, se corrobora y completa la teoría sosteni-
da por Kabata y Ho (1981), postulando en
definitiva que M. australis se habría originado
en el Atlántico (a partir de M. hubbsi) disper-
sándose luego hacia el Pacífico Sur (población
Patagónica) y Nueva Zelandia (población Neo-
zelandesa) (Fig. 3).

AGRADECIMIENTOS

Agradezco al Prof. Sr. Hugo I. Moyano por su
apoyo y estímulo permanente durante la reali-
zación de este trabajo, y a los licenciados Mar-
lene Gebauer, Mauricio Muñoz y César Vi-
llalba por la ayuda brindada durante el mues-
treo, todos ellos de la Universidad de Concep-
ción. Agradezco también en forma muy espe-
cial al Dr. Juan Carvajal y Lic. Eduardo Du-
rán, ambos de la Universidad Católica de Chi-
le, por su ayuda en el emprendimiento de este
estudio, y al Sr. Carlos Rojas, Jefe de Planta de
la Pesquera Eicomar Ltda., por las facilidades
prestadas durante la obtención de las mues-
tras.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

4]

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 43-47, 1985.

POSICION TAXONOMICA Y REDESCRIPCION DE PROCALUS VIRIDIS
(PHILIPPI Y PHILIPPI, 1864) (COLEOPTERA-CHRYSOMELIDAE)

Taxonomic status and redescription of Procalus viridis
(Philippi and Philippi, 1864) (Coleoptera-Chrysomelidae)

VIVIANE JEREZ R.*

RESUMEN

Se establece la correcta identidad de Procalus viridas (Phi-
lippi y Philippi, 1864); se redescribe la especie y se desig-
nan su lectotipo y neoalotipo. P. bipunctata (Allard, 1887)
es considerada sinónimo de P. viridas.

INTRODUCCION

R. Philippi y F. Philippi (1864) describieron en
forma muy general a Coelomera viridis especie
que fue asignada por Duvivier (1884) al géne-
ro Procalus (Clark, 1865). Posteriormente, La-
boissiere (1932) consideró a P. viridas como
una variedad de P. mutans (Blanchard 1851),
criterio que fue compartido por Bechyné
(1951).

Por otra parte, Allard (1887) describió para
Chile a Elithia bipunctata, especie que también
fue considerada por Bechyné (1956) como si-
nónimo de P. mutans.

Finalmente, Camousseight (1980) entre los
tipos de Insectos depositados en el Museo Na-
cional de Historia Natural de Santiago
(M.N.H.N.) señala la presencia de un holotipo

*Depto. Biología y Tecnología del Mar. Pontificia Univer-
sidad Católica de Chile. Casilla 127. Talcahuano-Chale.

ABSTRACT

The correct identity and description of the species
Procalus viridas (Philippi and Philippi, 1864), the lectotype
and the neoallotype are proposed. P. bipunctata (Allard,
1887) is considered synonymic with P. viridas.

Keywords: Chrysomelidae. Procalus viridis. Taxonomy.
Neotropical fauna. Chile.

(N? 3123) y un paratipo (N? 3124) de Coelome-
ra vtiridis Phil. y Phil., 1864.

Al respecto, Philippi y Philippi (1864) indi-
can que su descripción está basada en varios
ejemplares pero no designaron un holotipo
por lo que esta serie estaría representada por
sintipos. De estos se desprende que la designa-
ción por Camousseight (1980) de un holotipo -
y paratipo no tiene asidero. Por lo tanto, el
ejemplar número 3123 que corresponde a un
macho es aquí designado lectotipo. Con res-
pecto al otro ejemplar de la serie sintipo nú-
mero 3124, el análisis de la morfología exter-
na como de su genitalia revelan que corres-
ponde a una hembra de P. lenzi (von Harold,
1887).

Al comparar el lectotipo de P. viridis con la
descripción original y la serie sintipo de P.
mutans y esto complementado con observacio-

nes de terreno, nos muestra que se trata de dos

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

44
Tabla 1
Comparación entre los caracteres morfológicos de P. viridis y P. mutans
P. viridis P. mutans
cabeza verde roja
tórax y verde sin manchas verde con manchas en número
abdomen y disposición variables
pronoto 2 a 4 manchas negras 4 manchas
antenas café con manchas amarillas negras
patas rojas negras con fémures rojos
edeago (vista semirectangular semiovalado
dorsal)

especies diferentes (Tabla 1). Por lo tanto, las
consideraciones de Laboissiere (1932) y Be-
chyné (1951) de que P. viridas era sinónimo de
P. mutans no son correctas.

Finalmente, se comparó el lectotipo de P.
uiridis con el lectotipo de P. bipunctata; el análi-
sis de la morfología y de la genitalia nos permi-
te establecer que ambas especies son sinóni-
mos, prevaleciendo la designación de Phil. y
Phil. (1864) por prioridad. Es así que la sinoni-
mia señalada por Bechyné (1956) entre P. bi-
punctata y P. mutans no tiene validez debido a
lo señalado anteriormente.

Por lo tanto, y en vista de la confusión que
existe para la correcta identificación, de Proca-
lus viridis (Phil. y Phil., 1864), en el presente
trabajo se redescribe la especie, se designa el
lectotipo macho y se describe y designa su
neoalotipo hembra.

PROCALUS VIRIDIS
(Philippi R. y F. Philippi)
Fig. 1

Coelomera viridss Philippi y Philippi, 1864 b:
393; Philippi, 1887: 170 (listado).

Procalus viridis (Phil.), Duvivier, 1884:

CCCXIV (cambio de género); Blackwelder,
1946: 687 (listado); Bechyné, 1951: 94 (sino-
nimia); Jolivet, 1959: 9 (descripción ala).

Procalus mutans var, viridas (Phil.), Laboissie-
re, 1932: 147 (cambio de tribu).

Procalus mutans (no Blanchard), Bechyné,
1956: 297 (sinonimia).

Elithia bipunctata, Allard, 1887: cc; Black-
welder, 1946: 692 (listado); Bechyné, 1956:
297 (sinonimia).

Lectotipo. Un macho con etiqueta de identifica-
ción: “Coelomera viridis Phil., Chile (Talcau),
Tipo N* 1105, Holotipo N* 3123 M.N.H.N.
Santiago, Chile es designado lectotipo. Este
ejemplar está depositado en el Museo Nacio-
nal de Historia Natural de Santiago, Chile.

Diagnosis. Cuerpo y élitros verde intenso. Su-
perficie del pronoto y élitros glabra. Pronoto
con dos o cuatro manchas pequeñas, subcircu-
lares de color negro. Abdomen de los machos
con una foseta ovalada en el quinto esternito.

Descripción del macho,
Longitud: 7.0 mm - 7.2 mm (promedio)
Ancho: 3.9 mm - 4.1 mm (promedio)

Cabeza verde, vértex amarillento, superficie
lisa; espacio interocular con una hendidura
longitudinal profunda entre los alvéolos ante-
nales; área frontoclipeal solevantada en forma
triangular, con el vértice dirigido hacia arriba.
Labro subcircular. Maxilas poco esclerozadas
con lacinia y galea provistas de largos pelos;
Palpos maxilares con cuatro segmentos de co-
lor negro; primer segmento corto y cuadran-
gular; segundo y tercero rectangulares y unas
dos veces más largo que el primero; último

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 45

1mm

Fig. 1. Procalus viridis: Macho: a) Habitus; b) Labro; c) Mandíbula en vista lateral; d) Abdomen en vista ventral; e) edeago
en vista dorsal; f) edeago en vista lateral; Hembra: g) Mandíbula en vista lateral; h) espermateca.

46

segmento ovalado y un poco más corto que los
anteriores. Mandíbulas muy desarrolladas,
convexas en vista lateral, con cinco dientes, de
los cuales el tercero es romo en el ápice y un
poco más largo que el resto; la mandíbula
además presenta una profunda escotadura en
el margen superior entre los dientes 1 y 2;
Palpos labiales negros con tres segmentos.
Ojos semiovalados, levemente escotados en su
borde interno. Antenas filiformes alcanzan
hasta el quinto esternito abdominal; primer
segmento muy desarrollado, piriforme y casi
dos veces más largo que el segundo; la antena
alcanza su máximo ancho entre los segmentos
1 y 4, pilosidad escasa; el resto de los segmen-
tos está provisto de abundante pilosidad corta
y grisácea.

Pronoto subrectangular, débilmente con-
vexo y carenado en todos los márgenes; ángu-
los anteriores ligeramente dirigidos hacia ade-
lante; puntuación grande y concentrada hacia
los márgenes laterales; puede presentar dos o
cuatro manchas negras subcirculares. Escudo
triangular del color general del cuerpo, sin
puntuación. Elitros sobrepasan el abdomen,
un poco más anchos que el pronoto y casi tres
veces más largos que éste; borde interno
dehiscente en el tercio posterior de la sutura;
callo humeral forma un promontorio; márge-
nes laterales de los élitros plegados hacia las
epipleuras, estas bien desarrolladas en la base,
se adelgazan hacia el ápice; puntuación fina
pero escasa.

Proesterno aguzado. Mesoesterno más an-
cho que el anterior. Mitad superior del proe-
pisterno negra; meso y metaepisterno negros.
Abdomen con el primer segmento más largo
en su parte media que el resto de los segmen-

tos; quinto segmento con una gran foseta cen- :

tral ovalada.

Patas rojas; borde posterior de los fémures
acanalados; tibias con un diente apical; uñas
bífidas. Pigidio dos veces más largo que ancho.
Edeago corto y compacto con el extremo distal
semi rectangular en vista dorsal.

Nevalotipo. Hembra. Chile, Prov. Valparaíso;
Cerro La Campana; 15 - IV - 1982; Coll. V.
Jerez.; ex. Schinus latifolvus. Este ejemplar que-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

da depositado en el Museo de Zoología de la
Universidad de Concepción (MZUC).

Descripción.
Longitud: 7.8 mm - 8 mm (Promedio)
Ancho: 4.8 mm - 5 mm (Promedio)

Similar al macho pero de aspecto más robusto.
Espacio interocular sin hendidura longitudi-
nal; área frontoclipeal levemente solevantada.
Labro subrectangular. Mandíbulas en vista la-
teral de aspecto plano, con cuatro dientes de
los cuales el segundo es más largo y romo;
escotadura superior muy poco notoria. Ante-
nas filiformes más cortas que en el macho,
alcanzan hasta el primer esternito abdominal;
la forma de los segmentos de la antena es
semejante al macho y sólo hay variaciones en
la longitud y el ancho de ellos. Pronoto con
cuatro manchas negras dispuestas en semicír-
culo y una impresión transversal en la mitad
superior del disco. Elitros más anchos que el
pronoto. Abdomen con cinco esternitos visi-
bles, de longitud similar entre ellos y sin fose-
ta. Pigidio tres veces más largo que ancho.
Espermateca de forma característica y bien
esclerozada.

Material examinado

Un ejemplar macho depositado en el Muséum
National d'Histoire Naturelle, París y etique-
tado: Elithaa bipunctata, Chili, Ex. Musaeo E.
Allard, 1899; Muséum Paris, Chili, Gay 15-43
es designado lectotipo.

18 3 y 19 2 Provincia de Coquimbo: 1 2
Palquico (Illapel), 18-10-80, Col. V. Jerez. Pro-
vincia de Aconcagua: 2 Y Aconcagua, SE Zapa-
llar, 31-VIII-1967, Col: L. Peña. Provincia de
Santiago: 1 Y, El Cardonal Hda. San Miguel,
1953, Col: nn; 1 3, Stgo. El Tabo, 17-V-1961,
leg. Hoffman; Provincia de Valparaíso: 14 dG,
Valparaíso, Cerro La Campana, 15-1V-1981,
Col: V. Jerez; 12 2, Valparaíso, Cerro La
Campana, 15-IV-1981, Col. V. Jerez; 1 Y,
Cuesta La Dormida, 9-XI-1972, Col. L. Peña;
1 9, Qda. Alvarado, 15-VII1-1982, Col: V.
Jerez; 1 2, Algarrobo, XI-1970, Col: Ramírez;
1 gd, Valparaíso, Algarrobo, 18-9-51, Col:
Kuschel; 1 3, Valparaíso, Cerro La Campana,
15-IV-1982, Col. V. Jerez. 1 gd, Cta. Zapata,
IV-82, Col: J. Solervicens.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Planta hospedadora
Aunque Philippi y Philippi (1864) señalan que

esta especie vive sobre Duvaua dependente ac-
tualmente conocida como Schinus polygamus
(huingán), se ha colectado sólo sobre Schinus
latifoltus (molle).

Distribución geográfica

Se conoce solamente entre las provincias de
Coquimbo y Valparaíso (30%30'S - 71%00'W y
33%00'S - 71%30'W).

DISCUSION

Los individuos de esta especie presentan gran
uniformidad en la coloración del cuerpo y las
patas; el dimorfismo sexual está dado por el
gran tamaño de las antenas en los machos y
además por la presencia de la foseta abdomi-
nal la cual podría tener una función de anclaje
para la cópula.

La confusión creada en la correcta determi-
nación de las especies de Procalus se debe a que
los insectos conservados en las colecciones han

47

perdido la coloración y el diseño, lo que los
hace aparecer muy homogéneos. Esto se ha
evitado colocando los ejemplares inmediata-
mente muertos y montados en alfileres, den-
tro de una estufa de secado a 45%C por tres
días. Se observa que la coloración original de
los individuos permanece inalterable.

AGRADECIMIENTOS

La autora agradece muy en especial al Dr.

Jorge Artigas, Director del Departamento de

Zoología, Facultad de Ciencias Biológicas y
Recursos Naturales de la Universidad de Con-
cepción por acogerme en su Laboratorio y
darme las facilidades para realizar este tra-
bajo. A la Dra. Nicole Berti del Laboratorio
d'Entomologie del Muséum National d'Histoi-
re Naturelle, París, por la revisión del material
tipo. Al Prof. Jaime Solervicens por la revisión
del manuscrito y sus valiosas sugerencias y al
Sr. Gerardo Arriagada por el envío de los
tipos y material de colección del Museo Nacio-
nal de Historia Natural, Santiago.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 49-50, 1985.

PRESENCIA DE NIPPORHYNCHUS ORNATUS (VAN CLEAVE, 1918)
(ACANTHOCEPHALA: GORGORHYNCHIDAE) EN EL NORTE DE CHILE

Presence of Nipporhynchus ornatus (Van Cleave, 1918)
(Acanthocephala: Gorgorhynchidae) in northern Chile

MARCELO OLIVA M.*

RESUMEN

Se cita la presencia de Nipporhynchus ornatus (Van Cleave,
1918) Van Cleave, 1940 parasitando el intestino de Katsu-
wonus pelamis (L.) “Cachurreta” en el norte de Chile (Anto-
fagasta: 23%42'S. 70%24'0.). Este es el primer registro de
acantocéfalos adultos en peces marinos de Chile conti-
nental.

En febrero de 1983, se recolectó desde un
ejemplar de Katsuwonus pelamis (L.) “Cachu-
rreta”, capturado en Antofagasta, un macho
adulto de acantocéfalo. Las características del
parásito obtenido, tales como presencia de 4
glándulas del cemento, ganchos de la probos-
cis en numerosas filas y ganchos ventrales más
grandes que los dorsales, permiten incluirlo
en el género Nipporhynchus Chandler, 1934. El
tamaño de la proboscis, número y tamaño de
los ganchos, número de ganchos basales, así
como tamaño de los lemniscos, indican que
corresponde a N. ornatus (Van Cleave, 1918)
Van Cleave, 1940.

Van Cleave (1940), indica que N. katsuwonis

*Instituto de Investigaciones Oceanológicas Universidad
de Antofagasta. Casilla 1240, Antofagasta.

ABSTRACT

The presence of Nipporhynchus ornatus (Van Cleave, 1918)
Van Cleave, 1940 parasitizing the intestine of Katsuwonus
pelamis (L.) “Cachurreta”, from northern Chile is
registered. For the first time, and adult acantocephalan is
recorded from marine fishes of the Chilean continental

"coast.

Keywords: Fish parasites, Acanthocephala, Katsuwonus
pelamis, Zoogeography, Chile.

fue descrito originalmente por Harada (1928)
como Rhadinorhynchus katsuwonis. Posterior-
mente, Chandler (1934) crea el género Nippor-
hynchus sobre la base de R. katsuwonis, definien-
do a esta especie como tipo del género, la que
entonces pasa a denominarse Nipporhynchus
katsuwonis (Harada, 1928) Chandler, 1934.
Rhadinorhynchus ornatus Van Cleave, 1918 fue
adscrito tentativamente en este nuevo género,
debido a la falta de descripción de machos de
R. ornatus, ya que éstos presentan los más esta-
bles caracteres genéricos en la familia Gorgor-
hynchidae. Van Cleave (1940), encuentra
ejemplares machos de esta especie, en la colec-
ción Hancock, lo que le permite demostrar
que N. katsuwonis es sinónimo de N. ornatus,
por lo tanto, esta última especie deviene en
tipo del género.

50

Yamaguti (1963), no reconoce esta nueva
situación y mantiene a N. katsuwonis como es-
pecie tipo del género y a su vez lo incluye en la
familia Rhadinorhynchidae.

Golvan et Houin (1964), al redefinir la fa-
milia Gorgorhynchidae, indican que el núme-
ro exacto de glándulas del cemento es un im-
portante carácter sistemático a nivel de fami-
lia, e incluyen el género Nipporhynchus en la
familia Gorgorhynchidae, debido a la presen-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

cia de 4 glándulas del cemento y mantienen a
N. ornatus como especie tipo del género.

El hallazgo de un ejemplar macho de N.
ornatus en peces de las costas de Chile permite,
además de ampliar el rango de distribución de
la especie (conocida previamente en costas de
Japón, Océano Atlántico y en Isla Galápagos),
corroborar las características de N. ornatus y
reafirmar la sinonimización de Nipporhynchus
katsuwonas.

BIBLIOGRAFIA

Chandler, A. 1934. A revision of the genus Rhadinorhyn-
chus (Acanthocephala), with description of new genera
and species. Parasitol. 26: 352-358.

Golvan, Y. et R. Houin. 1964. Revisions des Paleacantho-
cephala (11 Note). La Famille des Gorgorhynchidae.
Ann. Parasit. Hum. et Com. 39: 535-605.

Van Cleave, H. 1940. The Acanthocephala collected by
the Allan Hancock Pacific Expedition. Allan Hancock
Pacif. Exped. 2: 501-516.

Yamaguti, S. 1963. Systema Helminthum. Vol. V Acan-
thocephala. Interscience Pub. 217 pp. 85 Pt.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 51-54, 1985.

COMPLEJO HIPOFARINGEO Y AREA OCULAR LARVAL DE
CHILECOMADIA MOORE] (SILVA) Y CHILECOMADIA VALDIVIANA
(PHILIPPI) (LEPIDOPTERA: COSSIDAE)

Hypopharyngeal complex and ocular area from larvae of
Chilecomadia moore: (Silva) and Chilecomadia valdiviana
(Philippi) (Lepidoptera: Cossidae)

LUIS E. PARRA*, ANDRES O. ANGULO* y CARMEN JANA-SAENZ*

RESUMEN

Se evalúa el complejo hipofaríngeo y área ocular de las
larvas de Chilecomadia moore: (Silva) y Ch. valdiviana (Phi-
lippi), como un carácter diagnóstico de ellas. Se ilustran
estos caracteres.

INTRODUCCION

La coloración que presentan los estados inma-
duros varía mucho, incluso dentro de una mis-
ma especie, lo cual puede llevar a considerarla
como dos especies diferentes o confundir a
dos o más en una sola. Para evitar este tipo de
problemas se analizan rasgos morfológicos
que indican la posibilidad de una clasificación
natural a organismos relativamente semejan-
tes. Dentro de estos rasgos está el complejo
hipofaríngeo y el área ocular (Crumb, 1956;
Beck, 1960; Godfrey, 1972).

Existen algunas dificultades para recono-
cer, a primera vista, las larvas de la Familia
Cossidae, sin embargo, se pueden caracterizar
de la siguiente manera (Paulian, 1963): Eruci-
formes. Sin cerdas secundarias. Espuripedios

*Depto. Zoología. Fac. Cs. Biol. y de Rec. Nat. Casilla
2407. Universidad de Concepción. Concepción - Chale.

ABSTRACT

The hypopharyngeal complex and ocular area from
larvae of Chilecomadia moore: (Silva) and Ch. valdiviana
(Philippi) are evaluated as diagnostic features. These
characters are illustrated.

Keywords: Lepidoptera. Cossidae. Larval anatomy.
Systematic. Neotropic.

presentes en el VI segmento abdominal. Cro-
chets dispuestos en círculo o elipse (a veces
interrumpido). Tres setas preespiraculares en
el protórax. Esclerito preespiracular aislado y
no unido al esclerito tergal o no individualiza-
do. Setas abdominales IV y V próximas, a
menudo sobre un tubérculo común. Setas II
del noveno segmento abdominal más cerca
que las setas I del octavo segmento abdominal.
Seta abdominal III situada detrás del espirá-
culo.

Se analiza para las dos especies del gusano
del tebo, Chilecomadia moorei (Silva) y Chileco-
madia valdiviana (Philippi) los caracteres antes
mencionados.

El presente trabajo fue financiado por la
Dirección de Investigación de la Universidad
de Concepción, a través del proyecto D. I.
20.38.03, a lo cual debemos nuestro agradeci-
miento.

52

ABREVIATURAS USADAS:

I-VI : ocelos laterales

As : cerda cefálica anterior

ce : cerda estipular

cplb;2 : cerda del palpo labial

eb : escudo basal del espinerete

espt : espinerete

htm : hendidura transversal media

O.3 : cerda lateral cefálica

pabm : punto de articulación del brazo ma-
xilar

plb : palpo labial

red : región distal

repl : región próximo lateral

splb;2 : segmento del palpo labial

RESULTADOS:
Chilecomadia moore: (Silva)

a. Complejo hipofaríngeo (Fig. 1): espinerete
(Fig. 3) con los lados subconvergentes; splb,
más splb» tres cuarto el largo del espinerete;
espinerete de ápice trunco y recto con el mar-
gen completo; escudo basal del espinerete al-
canza dorsalmente hasta la mitad de la longi-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

tud de éste. Cerda estipular más larga que
cplb, y subigual al largo de cplb>; hendidura
transversal notable separando las regiones
proximal y distal.

b. Area ocular (Fig. 7): la línea que une a los
ocelos 1 y VI pasa exactamente por la base de
la cerda O; la línea que une los ocelos II y V
pasa por el lado anterior del ocelo IV.

Chilecomadia valdiviana (Philippi)

a. Complejo hipofaríngeo (Fig. 2): espinerete
(Fig. 4) con los lados subconvergentes; splb;
más splb> la mitad del largo del espinerete;
espinerete de ápice trunco, pero de margen
escotado dorsalmente; escudo basal del espi-
nerete alcanza el tercio basal de la longitud de
éste. Cerda estipular más larga que cplb, pero
menos larga que cplb»; hendidura transversal
poco notable, separando las regiones proxi-
mal y distal.

b. Area ocular (Fig. 8): la línea que une a los
ocelos 1 y VI pasa anteriormente y algo alejado
de la base de la cerda Os; la línea que une los
ocelos III y V pasa exactamente por el centro
del ocelo IV (es decir, los ocelos MI, IV y V
están ordenados en línea recta).

CARACTERES DIAGNOSTICOS DIFERENCIALES

Caracteres

Ch. moore: (Silva)

Especies
Ch. valdiviana (Phil.)

Longitud del escudo relativo a
espinerete.
de éste.
Apice del espinerete.
completo.
Longitud del palpo labial y es-
pinerete
Recta que une ocelos 1 y VI.

espinerete.

seta Ob.

Escudo basal del espinerete
alcanza dorsalmente la mitad

Trunco y recto con el margen

Palpo labial 3/4 el largo del

Recta pasa por la base de la

Escudo basal del espinerete
alcanza el tercio basal de éste.

Trunco de margen escotado.

Palpo labial la mitad del espi-
nerete.
Recta pasa anteriormente y
algo alejada de la base de la
seta O».

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 53

Figs. 1, 3, 5 y 7 Chilecomadia moorei (Silva): 1. Complejo hipofaríngeo. 3. Espinerete. 5. Palpo labial. 7. Area ocular.
Figs. 2, 4, 6 y 8 Chilecomadia valdiviana (Philippi): 2. Complejo hipofaríngeo. 4. Espinerete. 6. Palpo labial. Area ocular.

54

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

BIBLIOGRAFIA

Beck, H. 1960. Die Larvalsystematik der Eulen (Noctui-
dae). Akademie Verlag, Berlin. 406 pp.

Bries, Ch. T., Melander, A.L. y Carpenter, F.M. 1954.
Classification of insects. Bull. Mus. Comp. Zool. 108:
271-285.

Crumb, S.E. 1956. The Larvae of the Phalaenidae. Tech-
nical Bulletin N* 1135. United States Department of
Agriculture. 356 pp.

Godfrey, G.L. 1972. A Review and Reclassification of

Larvae of the Subfamily Hadeninae (Lepidoptera:
Noctuidae) of America North of Mexico. Technical
Bulletin N* 1450. Agricultural Research Service. Uni-
ted States Department of Agriculture. 265 pp.

Paulian, R. 1963. Atlas des larves de insectes de France.
Edit. N. Boubeé £c Ci”. pág. 79-100.

Ureta, E. 1959. Revisión de la familia Cossidae (Lep. Het.)
en Chile Bol. Mus. Nac. de Historia Natural. Tomo
XVII (2): 129-153.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 56, pp. 55-58, 1985.

A SYNONYMIC LIST OF CHILEAN BULIMULIDS
(MOLLUSCA: PULMONATA)

Lista sinonímica de Bulimúlidos chilenos
(Mollusca: Pulmonata)

JOSE STUARDO* y CLAUDIO VALDOVINOS*

RESUMEN

Los Bulimúlidos chilenos, constituyen un componente
importante de los moluscos terrestres del extremo sur de
Sudamérica. Complementando información incluida en
una sinopsis de los moluscos terrestres de Chile, publicada
en otra revista, se presenta una lista de los sinónimos de 29
especies de Bostryx s.l. y de 10 especies y 1 subespecie del
género Plectostylus.

INTRODUCTION

Among the 14 families of land-mollusca reg-
istered from Chile, the Bulimulidae did not
reach the oceanic islands; yet they are an im-
portant component of the continental fauna
due to its diversity of genera and subgenera.

Following the information recently com-
piled by Stuardo and Vega (1985) we conclude
that there are 29 species of the genus Bostryx,
subgenera Bostrix s.s., Ataxus, Platybostryx, Per-
onaeus and Lissoacme, and 10 species and one
subspecies of the genus Plectostylus. A series of
additional names have been listed as syn-
onyms of one or other of the better known

*Departamento de Oceanología Universidad de Concep-
ción Casilla 2407, Concepción, Chile.

ABSTRACT

The Chilean Bulimulidae are an important component of
the land molluscan fauna of southern South America.
The list gives additional information to a synopsis of the
land molluscan fauna published elsewhere and includes
the synonyms of 29 species of the genus Bostryx s.l. plus 10
species and 1 subspecies of the genus Plectostylus.

Keywords: Land molluscs, Chile, Bulimulidae, taxonomy,
synonyms.

species, although in some cases these syn-
onyms have been proposed with doubts. Re-
cently, Breure (1979) in a world revision of the
family considers some of these synonyms as
either valid species or nomina inquirenda,
following the requirements posed by a present
day taxonomy which (outside the shell) con-
siders the description and analysis of various
structures and organs, specially, the radula,
the pallial organs and the penial complex.
Work in progress, considers a detailed syn-
onymic analysis of the Chilean species by
genera and subgenera. However, given the
complexity of this group and aiming to ad-
vance information to facilitate an understand-
ing of this malacofauna, we are presenting the
following list of valid species and synonyms. lt

56

considers traditional criteria, the important
opinion of Breure (1979) and our own points

of view.

In the list, only valid names are indicated in

affinis Broderip, 1832 [Bulinus]

albicans Broderip, 1832 [Bulinus]

albus Sowerby, 1833 [Bulinus]

albus var. albicans Hidalgo, 1872

aldunatea Hupé, 1846 [Helix(Bulimus)]
anachoreta Pfeiffer, 1856, [Bulimus]
argentinensis Parodiz, 1951 [Plectostylus]
arrosus Sowerby, 1841 [Bulimus]
atacamensis Pfeiffer, 1856 [Bulimus]
boithyanus H. 8 A. Adams, 1855
[Orthalicus (Mesenbrinus)]
broderipu Sowerby, 1832 [Bulinus]

buschi Pfeiffer, 1842 [Succinea]

cactorum d'Orbigny, 1835 [Helix]

chilensis Lesson, 1826 [Bulimus]

conspersus Potiez € Michaud, 1838

coquambensis Broderip, 1832 [Bulinus]
corrugatus King, 1831 [Bulinus]
coturnix Sowerby, 1832 [Bulinus]

curtus Koch, 1844 [Bulimus]

derelictus Broderip, 1832 [Bulinus]
elegans Pfeiffer, 1842 [Bulimus]

eremothauma Pilsbry, 1896

[Bostryx (Platybostryx)]

erosus Broderip, 1832

eryihrostoma Sowerby, 1833 [Bulinus]
feisthameli Hupé, 1854 [Bulimus]

flavescens King, 1831 [Partula]

foveolatus Reeve, 1849 [Bulimus]

gay Rehder, 1945 [Peronaeus]

granifer Beck, 1837 [Bulimulus]
granulosus Broderip, 1832 [Bulimus]

gravesil King, 1831 [Bulinus]

guttatus Broderip, 1832 [Bulinus]

hamilton: Reeve, 1849 [Bulimus]
hennahi Gray, 1830 [Bulimus]

holostoma Pfeiffer, 1846 [Bulimus]
huascensis Reeve, 1848 [Bulimus]
infundibuliformis Jay, 1848 [Bulimus]

ischnus Pilsbry, 1902

1S
1S
1S

[Bulimulus (Bostryx)] is

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

italics and the original generic name is quoted
after each specific name in brackets. Some
punctual comments on the status of a few
species are also included.

SYNONYMIC LIST

Bostryx (Lissoacme) affinis
Bostryx (Lissoacme) albicans
Bostryx (Lissoacme) erythrostomus var. albus (1)

albicans
Plectostylus chilensis
Bostryx (Peronaeus) anachoreta

? mariae

erosus
Bostryx (Peronaeus) atacamensis
votthianus

Plectostylus broderipi
Plectostylus buschi
hennaht

Plectostylus chilensis

albicans

Plectostylus coquambensis
peruvianus

Plectostylus coturnix

derelictus

Bostryx (Lissoacme) derelictus
coquimbensis

Bostryx (Platybostryx) eremothauma

Bostryx (Lissoacme) erosus (1)
Bostryx (Lissoacme) erythrostomus
votthianus

chilensis

Thaumastus foveolatus

Bostryx (Peronaeus) gay
chilensis

chilensis

peruvianus

Bostryx (Lissoacme) guttatus
Bostryx (Peronaeus) hamiltona
Bostryx (Lissoacme) hennahi
Bostryx (Bostryx) holostoma
Bostryx (Lissoacme) huascensis
umbilicaris

Bostryx (Peronaeus) ischnus

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

lactifluus Pfeiffer, 1857 [Bulimus]
laurenti Sowerby, 1833 [Bulimus]
leucostictus Philippi, 1856 [Bulimus]
lichenorum d'Orbigny, 1835 [Helix]
longurio Crosse, 1869 [Bulimus]
lychenorum Sowerby, 1838 [Bulimus]
mariae S.T. Brooks, 1936

[Plectostylus]
mejillonensis Pfeiffer, 1857

[Bulinus]

metamorphus Pilsbry, 1896

[Bulimulus (Bostryx)] ¡

mexilloensis Paetel, 1889 [Bulimus]
moestai Dunker, 1864 [Bulimus]
modestus Broderip, 1832 [Bulinus]
nanus Reeve, 1849 [Bulimus]
ochsenúi Dunker, 1855 [Bulimus]
olorinus Duclos, 1833 [Bulimus]
paposensis Pfeiffer, 1856 [Bulimus]
peruvianus Bruguiere, 1789 [Bulimus]
philippi Rheder, 1945 [Peronaeus]
coquimbensis var. perelegans Pilsbry, 1897
[Bulimulus (Plectostylus)]

prolatus Gould, 1846 [Bulimus]
pruimosus Sowerby, 1833 [Bulinus]
pulicarius Beck, 1837 [Bulimus]
pumilio Rehder, 1945 [Peronaeus]
punctulifer Sowerby, 1833 [Bulinus]
pupiformis Broderip, 1832 ]Bulinus]
pustulosus Broderip, 1832 [Bulinus]
reentsi Philippi, 1851 [Bulimus]
reentsii Philippi, 1855 [Helix]
reflexa Pfeiffer, 1842 [Succinea]
rhodacme Pfeiffer, 1842 [Bulimus]
roualtii Hupé, 1854 [Bulimus]
rubescens Reeve, 1848 [Bulimus]
rupicolis Reeve, 1848 [Bulimus]
scabiosus Sowerby, 1833 [Bulinus]
scabrosus Rehder, 1945 [Peronaeus]
scutulatus Broderip, 1832 [Bulinus]
spixii Potiez 8: Michaud, 1838

[Bulimus] ¡

terebralis Pfeiffer, 1842 [Bulimus]
umbilicaris Souleyet, 1842 [Bulimus]
vagabondiae Brooks, 1936 [Plectostylus]
vanriegata Pfeiffer, 1842 [Succinea]
virginalis Morelet, 1860 [Bulimus]
voilthianus Pfeiffer, 1847 [Bulimus]

1S

1S

1S

Bostryx (Peronaeus) lactifluus
Bostryx (Lissoacme) laurenta
Bostryx (Peronaeus) leucostictus
Bostryx (Peronaeus) lichenorum
atacamensis

hennahi

Plectostylus mariae
Bostryx (Lissoacme) mepillonensis

Bostryx (Lissoacme) metamorphus
mejillonensis

Plectostylus moestar

Bostryx (Lissoacme) modestus
pumilio

Plectostylus ochsent

Bostryx (Lissoacme) erythrostomus var. albus
affinis

Plectostylus peruvianus

Bostryx (Peronaeus) philippu
Plectostylus coquimbensis

var. perelegans

chilensis

Bostryx (Lissoacme) prumnosus
peruvianus

Bostryx (Peronaeus) pumilio
Plectostylus punctulifer

Bostryx (Peronaeus) pupiformas
Bostryx (Peronaeus) pustulosus
Bostryx (Lissoacme) reents
eremothauma

Plectostylus reflexus

Bostryx (Peronaeus) rhodacme
prumosus

hennahi

variegatus

Bostryx (Peronaeus) scabi0sus
scabtosus

Bostryx (Lissoacme) scutulatus

albicans

ischnus

Bostryx (Ataxus) umbilicaris
Plectostylus vagabondiae
Plectostylus variegatus
hennahi

Bostryx (Lissoacme) vorihianus

57

(2)

(3)

58

TAXONOMIC REMARKS

1. Bulimus albus Sowerby, 1833 was considered
by Pilsbry (1896) as a variety of Bostryx (Lis-
soacme) erithrostomus (Sowerby, 1833), and Bul:-
nus erosus Broderip, 1832 ascribed by the same
author to the genus Bostryx, subgenus Bostryx
s.s. Breure (1979) placed both species in a list
of nomina inquirenda for the genus Simpulopsis,
subgenus Eudioptus Albers, 1960, suggesting,
however, that they could belong to the genus
Bostryx.

2. The species Bulinus guttatus Broderip, 1832,
Bulimulus (Bostryx) metamorphus Pilsbry, 1896
and Bulimus olorinus Duclos, 1833, the latter
considered here a synonym of Bostryx (Las-
soacme) erythrostomus (Sowerby, 1833), are in-
cluded in a list of nomina inquirenda for the

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

genus Simpulopsis, subgenus Eudioptus Albers,
1860, by Breure (op. cit.). This author, how-
ever, suggests that the three named species
could belong to the genus Bostryx.

3. Breure (op. cit.) includes Bulimus voithianus
Pfeiffer, 1847 in a list of nomina inquirenda for
the genus Scutalus, 1850, subgenus Ver-
miculatus Breure, 1978. However, it also sug-
gests that it might belong to the genus Bostryx.

4. Pilsbry (1896) considers Bulimus spixi Potiez
and Michaud, 1835 as synonym of Bostryx (Las-
soacme) albicans. Breure (1979) listed it among
nomina inquirenda for the genus Simpulopsis,
subgenus Eudioptus Albers, 1860, but also sug-
gested that it might belong to the genus Bos-

tryx.

BIBLIOGRAFIA

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lusca of Chile. With remarks on distribution. Studies
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Additional detailed references can be found in the
above listed works.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 59-66, 1985.

LEPEOPHTHEIRUS MUGILOIDIS SP. N. (COPEPODA: CALIGIDAE) PARASITO
DE MUGILOIDES CHILENSIS (MOLINA, 1782)
(PISCES: MUGILOIDIDAE), EN CHILE.

Lepeophtheirus mugiloidis sp. n. (Copepoda: Caligidae)
a parasite on Mugiloides chilensis (Molina, 1782)
(Pisces: Mugiloididae), in Chile.

CESAR VILLALBA S.* y LUIS DURAN B.**

RESUMEN

Se describe Lepeophtheirus mugiloidis sp. mn. (Copepoda:
Caligidae) parásito de ejemplares de Mugilordes chilensis
(Molina, 1782) (Pisces: Mugiloididae) recolectados en Ca-
leta Cascabeles (31%55'S;71%31'0) y en Caleta Reque
(3645'S; 73”11'0), Chile.

INTRODUCCION

El género Lepeophtherrus Nordman, 1832, está
representado en Chile por 9 especies: £. nord-
mana (Milne-Edwards, 1840), L. chilensis Wil-
son, 1905, L. dissimulatus Wilson, 1905, L. ed-
wardsi Wilson, 1905, L. imteritus Wilson, 1921,
L. yañezi Stuardo y Fagetti, 1961, L. selkirka
Atria, 1969, L. zbigniew Castro y Baeza, 1981,
y L. frecuens Castro y Baeza, 1984, todos ellos
parásitos de peces marinos (Atria, 1977; Cas-

*Depto. Zoología. Fac. Cs. Biol. y de Rec. Nat. Casilla
2407. Universidad de Concepción. Concepción-Chile.
**Lab. de Zoología, Fac. Cs. Biol. Casilla 114-D. Pontificia
Universidad Católica de Chile. Santiago-Chile.

ABSTRACT
Lepeophtheirus mugiloidis sp. n. (Copepoda: Caligidae), a
parasitic copepod found in Mugiloides chilensis (Molina,
1782) (Pisces: Mugiloididae), taken from Caleta Cascabe-
les (31%55'S; 71%31"W) and Caleta Reque (36%45'S;
7311'"W), Chile, is described.

Keywords: Fish parasites. Copepoda, Caligidae. South-
eastern Pacific.

tro y Baeza, 1981, 1984; Baeza y Castro,
1982).

Durante el año 1982 se recolectaron copé-
podos pertenecientes al género Lepeophiheirus,
de la superficie corporal, cavidad bucal y arcos
y filamentos branquiales de 200 ejemplares de
Mugiloides chilensis (Molina), capturados en
Caleta Cascabeles y Caleta Reque, Chile.

El estudio de los copépodos recolectados
permite proponer la existencia de una nueva
especie, denominada Lepeophtheirus mugilordas,
la cual se describe a continuación.

Los caracteres diagnósticos utilizados co-
rresponden a los señalados por Kabata (1973,
1979), considerando en la hembra: 1) caracte-
rísticas de la primera maxila, principalmente

60

la forma y tamaño de sus ramas; 2) caracterís-
ticas de la furca; 3) posición de la seta entre
simpodio-exopodio y características de las es-
pinas y setas apicales del primer exopodito en
el primer par de patas; 4) posición de las espi-
nas externas del exopodito del segundo par de
patas y de la espina basal en el tercer par de
patas; 5) características del cuarto par de patas
en cuanto a sus espinas internas y apicales; 6)
forma del quinto par de patas; y en el macho:
1) la forma de la garra de la segunda antena y
2) la configuración de la primera maxila. Exis-
ten otros caracteres que fueron considerados
tanto en las hembras como en los machos,
pero de menor valor sistemático (Kabata,
1979).

Lepeophtheirus mugilordis sp. n.
Figs. 1-22

Descripción de la hembra (Holotipo)

Caparazón cefalotorácico subcircular, ligera-
mente más largo que ancho, con senos poste-
riores pocos profundos. Margen posterior del
área torácica redondeada y a igual nivel que
los márgenes posteriores de las carinas latera-
les (Fig. 1). Segmento libre bien definido y al
igual que el segmento genital mucho más an-
cho que largo. Extremos posteriores de este
último formando lóbulos redondeados. Abdo-
men simple, alargado y aproximadamente 1/3
de la longitud del segmento genital. Láminas
caudales cuadrangulares y armadas con 6 se-
tas: 3 apicales, 1 ventral y 2 laterales.

Primera antena (Fig. 7) bisegmentada. Am-
bos segmentos provistos de numerosas setas.
Segmento distal pequeño y provisto de una
seta sensitiva apical. Segmento proximal ro-
busto y con un pequeño proceso en su margen
interno. Segunda antena (Fig. 12) de forma
típica y con una seta no pinada en el margen
interno del segmento distal. Proceso postante-
nal (Fig. 15) curvado, con 2 setas pequeñas
ramificadas.

Primera maxila (Fig. 8) bífida, de base an-
cha y con ramas de similar tamaño redondea-
das en sus extremos. Segunda maxila (Fig. 11)
bisegmentada, relativamente larga y delgada y
con una pequeña espina en el proceso corto
terminal. Maxilípedo (Fig. 9) con 2 segmen-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

tos, el basal mucho mayor que el distal. Este
último subquelado y armado con una seta en
la parte media de su margen interno. Furca
(Fig. 6) de ramas divergentes con sus extre-
mos agudos y redondeados.

Primeras patas con una seta plumosa en la
unión simpodio-exopodio, de base pequeña,
cónica y expuesta: lateral a ella se sitúa un
proceso con 2 setas pequeñas (Fig. 14). Seg-
mento distal armado con 3 setas pinadas late-
rales y 4 setas en su extremo apical: seta 1
simple, setas 2 y 3 de punta bífida y seta 4
pinada (Fig. 13).

Segundas patas birrámeas (Fig. 19). Exopo-
dito trisegmentado. Segmento medio y proxi-
mal con una espina apical en su margen exter-
no y una seta en el interno. Segmento distal
con 6 setas y 2 espinas cuya longitud sobrepasa
ligeramente el extremo del exopodito. Endo-
podito trisegmentado y provisto de numero-
sas setas.

Terceras patas de estructura usual. Seg-
mento basal del exopodito (Fig. 18) con una
espina gruesa de posición subterminal y una
pequeña lámina lateral. Margen externo de
dicho segmento con 3 setas pequeñas.

Cuartas patas (Fig. 16) con la parte distal
trisegmentada, con su margen interno pecti-
nado (Fig. 17). Parte proximal de gran tama-
ño y con una seta en su borde distal. Segundo
segmento de la parte distal de mayor longitud
que los otros dos y con una espina desarrolla-
da en su extremo distal. Primer segmento de
menor longitud y provisto de una espina pe-
queña. Tercer segmento con 3 espinas desa-
rrolladas, de diferente longitud y ubicadas
distalmente. Cada espina presenta en su base
una placa lunada.

- Quintas patas (Fig. 20) rudimentarias, re-
dondeadas y con 3 setas en su margen exter-
no. Lateral a éstas y cerca del borde del seg-
mento genital se observa una seta aislada.

Descripción del macho (Alotipo)

De menor tamaño que la hembra (Fig. 2). Ca-
parazón cefalotorácico de igual forma. Seg-
mento genital subrectangular. Abdomen sim-
ple, tan largo como ancho (Fig. 21). Primera
antena, proceso postantenal, segunda maxila,

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

furca, primeras, segundas, terceras y cuartas
patas similares a las de la hembra.

Segunda antena (Fig. 10) trisegmentada.
Segmento basal y medio con cojinetes adhesi-
vos. Garra terminal, bífida, provista en su
margen interno de una seta y una espina con
su extremo bífido. Primera maxila (Fig. 5) con
ramas de igual longitud y con un proceso late-
ral casi de igual tamaño y forma que una de las
ramas. Maxilípedo (Fig. 3) similar al de la
hembra, pero armado de una apófisis en el
segmento basal opuesta a la seta del segmento
distal (Fig. 4).

Quintas patas rudimentarias, alargadas y
provistas de 3 setas apicales y una seta lateral.
Sextas patas al igual que las quintas rudimen-
tarias y con 3 setas de desigual tamaño
(Eigo22)

Medidas de los ejemplares: En la Tabla I se
señalan las medidas del Holotipo, Alotipo y de
40 de los 130 paratipos, elegidos al azar, de £.
mugiloidis Sp. n.

Material estudiado: 2.287 copépodos (344
machos, 1.135 hembras y 808 cálimus y prea-
dultos), obtenidos de 100 ejemplares de M.
chilensis recolectados en Caleta Cascabeles;
1.249 copépodos (356 machos, 824 hembras y
69 cálimus y preadultos) obtenidos de 100
ejemplares de M. chilensis recolectados en Ca-
leta Reque.

Holotipo: 1 hembra. Caleta Cascabeles.
MZUC N” 3221, Alotapo: 1 macho. Caleta Cas-
cabeles. MZUC N* 3222, ambos depositados
en el Museo Zoológico de la Universidad de
Concepción, Chile.

Paratipos: 130 ejemplares. 120 de ellos de-
positados en el Museo Zoológico de la Univer-
sidad de Concepción, en las siguientes condi-
ciones: 1 frasco con 20 hembras, Caleta Re-
que, MZUC N”? 3240; 1 frasco con 20 machos,
Caleta Reque, MZUC N* 3241; 1 frasco con 50
hembras, Caleta Cascabeles, MZUC N? 3249;
l frasco con 30, machos, Caleta Cascabeles,
MZUC N” 3243. Los otros 10 paratipos depo-
sitados en el U.S. National Museum de Was-
hington (5 machos y 5 hembras).

Hospedador: Mugilorwdes chilensis (Molina,
1782) (hospedador tipo).

Hábitat: Copépodos adultos sobre la super-
ficie corporal; cálimus y preadultos en los ar-

61

cos y filamentos branquiales y en la cavidad
bucal.

Localidad: Caleta Cascabeles (31%55'S;
719%31'0) (localidad tipo) y Caleta Reque
(36%45'S; 73%11'0).

Etimología: El nombre específico mugrloidis
hace referencia al hospedador Mugilordes chi-
lensis.

DISCUSION

Las 9 especies de Lepeophtheirrus previamente
registradas en peces marinos en Chile son: L.
nordmanua (Milne-Edwards), L. chilensis Wil-
son, L. edwardsi Wilson, L. dissimulatus Wilson,
L. interitus Wilson, L. yañezi Stuardo y Fagetti,
L. selkirki Atria, L. zbigniewi Castro y Baeza y L.

frecuens Castro y Baeza. Todas estas especies

presentan abdomen corto (longitud igual o
menor a 1/2 de la longitud del segmento geni-
tal) al igual que L. mugilordas sp. n.

L. nordmanu y L. dissimulatus son las espe-
cies, morfológicamente, más distantes de L.
mugllordis sp. n. y la forma general del cuerpo
permite distinguirlas con facilidad. £L. yañez
posee la primera maxila no bífida, carácter
que la separa de L. mugiloidis y de las demás
especies señaladas. L. interitus, L. selkirka y L.
edwardsi presentan el quinto par de patas de
forma triangular en lugar de redondeado co-
mo en la nueva especie. En L£. chilensis la pri-
mera maxila es de ramas desiguales, siendo la
rama interna visiblemente más pequeña. Den-
tro de las especies chilenas, £L. zbigniew: y L.

frecuens son las que presentan mayor semejan-

za con la nueva especie, diferenciándose de
éstas en la forma de la 2* antena y maxilípedo
del macho y en la 1% maxila de la hembra.
Además, L. mugrlordis presenta diferencias con
L. zbigniewi en la estructura de las primeras y
terceras patas y con L. frecuens en la propor-
ción de los segmentos de la primera antena y
en la longitud de las láminas caudales respecto
del abdomen.

Las especies que presentan semejanzas con
L. mugiloidis sp. n., además de las especies chi-
lenas, son £L. oblatus Kabata, 1973; L. parvus
Wilson, 1908; £L. pravipes Wilson, 1912 y L.
scutiger Shiino, 1956. En la Tabla II se señalan
las principales diferencias existentes entre las

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

62

(330'0 - 9130)
(LE7'O - 918'0)
(680 - €IS'0)
(S6£'0 - £15'0)
(9180 - PLP0)
(L6T'O - 943'0)
(6591 - 9981)
(LLL V- S€6'1)
(PP8Z - L6€'€)
"TUINA "XP

soyyeu sodneJeg

(19b'I - 1983)
(9,30 - 968'0)
(918'0 - PLP'0)
(38€'1 - 4181)
(990'1 - 33H 1)
(TIZ'O - 8060)
(LEZ'O - <68'0)
(9793 - TPO0'£)
(P08'3 - 091'£)
(910'S - 609'9)
"UA "XEN

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06860
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09850
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0180 [2UInuIopqe OJUYQUIÍIS OYYUY
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63

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

64 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Figs. 1-10. Lepeophthewrus mugiloidis sp. n. Fig. 1. Hembra, vista dorsal; Fig. 2. macho, ídem.; Fig. 3. maxílipedo, macho;
Fig. 4. Apófisis del segmento basal del maxilípedo, macho; Fig. 5. primera maxila, macho; Fig. 6. furca, macho y hembra;
Fig. 7. primera antena, macho y hembra; Fig. 8. primera maxila; hembra; Fig. 9. maxilípedo, hembra; Fig. 10. segunda
antena, macho.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 65

Mo 12

Figs. 11 - 22. Lepeophtheirus mugiloidis sp. n. Fig. 11. Segunda maxila, macho y hembra; Fig. 12. segunda antena, hembra;
Fig. 13. extremo apical del primer par de patas, macho y hembra; Fig. 14. unión simpodio-exopodio del primer par de
patas, macho y hembra; Fig. 15. proceso postantenal, macho y hembra; Fig. 16. cuartas patas, macho y hembra; Fig. 17.
margen interno del segmento distal de las cuartas patas, macho y hembra; Fig. 18, segmento basal o exopodito del
tercer par de patas, macho y hembra; Fig. 19. exopodito del segundo par de patas, macho y hembra; Fig. 20. quintas
patas, hembra; Fig. 21. segmento genital y abdomen, macho; Fig. 22. quintas y sextas patas, macho.

66

especies antes mencionadas y las especies chi-
lenas con Lepeophtherrus mugiloidis sp. n.

AGRADECIMIENTOS
Se agradece al Sr. R. Cressey del U.S. National

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Museum por el envío del paratipo de L. parvus
(U.S. Nat. Mus. 32815), con el que se comparó
la nueva especie; al Sr. Prof. Hugo I. Moyano
por la corrección crítica del manuscrito, y a los
correctores anónimos por sus valiosas suge-
rencias.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 67-70, 1985.

SOBRE LA LARVA DE CNESIAMIMA ATROPARVA EDWARDS
Y SU SIGNIFICADO PARA INTERPRETAR LAS RELACIONES
FILOGENETICAS DE LOS SIMULIDOS NOTOGEICOS
(INSECTA, DIPTERA, SIMULIIDAE).

On Cnesiamima atroparva Edwards larva and its significance to
interpret the phylogenetic relationships of notogeic black flies
(Insecta, Diptera, Simuliidae).

SIXTO COSCARON*

RESUMEN

El descubrimiento de la larva de Cnestamima atroparva
—Qque aquí se describe e ilustra— permite confirmar las
relaciones con Paraustrosimulium anthracinum (Bigot) y
compararla con las especies de Austrosimulium.

Cnestamima y Paraustrosimulvum muestran estrecha afi-
nidad, formando un grupo natural dentro de los Prosi-
muliini Neotropicales. Ambos géneros muestran también
relaciones estrechas con el género vicariante Austrosimu-
lium, cuya mayor afinidad es con los prosimuliini neotro-
picales que con los australianos.

Uno de los problemas que más apasiona a los
zoólogos es llegar a una adecuada clasificación
y poder establecer los orígenes de la fauna y
las posibles interrelaciones de los taxa. Dentro
de esta problemática un tema que siempre se
mantiene latente, es el de las relaciones de la
fauna patagónica y australiana, y sus posibles
conexiones transantárticas.

Esta relación ha sido establecida con diver-
sos dípteros, tales como Tabanidae, Blepharo-

*Museo La Plata, Argentina.

ABSTRACT

The discovery of the Cnesiamima atroparva larva permits to
confirm its relationships with Paraustrosimulium anthraci-
num (Bigot) and its comparisons with the species of Austro-
simulium. This larva is described and illustrated.

The genera Cnesiamima and Paraustrosumulium show
close affinity forming a natural group into the neotropical
Prosimuliini. Both genera also show close relationships
with the vicariant genus Austrosimulium, which has more
affinity with neotropical than other australian prosimu-
limi.

Keywords: Diptera. Simuliidae. Phylogeny. Neotropical
fauna. Cnestamima atroparva.

ceridae, Chironomidae, Tachinidae, Terato-
myzidae, Helosciomyzidae, etc. en que la vica-
riancia es manifiesta. En Simultidae todavía
existen algunas interrogantes, ya que se care-
cía de la información que podría brindar la
morfología de la larva de Cnessamima atropar-
va, especie que presenta estrecha afinidad con
Paraustrosimulium anthracinum (Wygodzinsky y
Coscarón 1973 a y b). Esta última ha sido trata-
da por diversos autores con el objeto de esta-
blecer sus relaciones con la fauna australiana.
Paraustrosimulium anthracinum fue considera-
da por Edwards (1931) como perteneciente a

68

Austrostmulium;, posteriormente Wygodzinsky
y Coscarón 1962 demuestran diferencias
apreciables por lo que sugieren separarlo en
un subgénero Austrosimulium (Paraustrosimu-
um), al que más tarde Crosskey (1969) le asig-
na categoría de género.

El hallazgo de la pupa de Cnesitamima atro-
parva, en Talca, Alto de Vilches (Chile) por
Wygodzinsky y Coscarón 1973, brindó la
oportunidad a estos autores de demostrar la
afinidad de estas dos especies. Nuevos mate-
riales obtenidos en Tierra del Fuego y Río
Negro, permitió disponer de abundantes pu-
pas y larvas, estas últimas desconocidas. Los
imagos obtenidos por cría, así como las pupas
coinciden con el material previamente conoci-
do de esta especie.

Descripción de la larva: Longitud máxima
6,0-6,5 mm; ancho máximo de cápsula cefáli-
ca 0,7 mm. Aspecto del cuerpo de acuerdo a
figura A, con papila ventral subterminal evi-
dente. Color gris verdoso pálido, cabeza clara.
Apotoma cefálico castaño amarillento con
manchas positivas castaño obscuro y ensan-
chado por delante del borde posterior (fig. B).
Escleritos cervicales reducidos y aislados del
postocciput, abertura postgenal no diferencia-
da (fig. C). Antenas sobrepasando la base de
los abanicos cefálicos. Artejos basales de la
antena menos de la mitad del largo que el
tercero, este último fino y muy poco escleroti-
zado (figs. D-F). Relación de los artejos 1-
III = 1:0,16-0,27:2,5-3,4. Abanico cefálico
con rayos finos presentando denticiones
mayores relativamente alternadas. Mandíbu-
las con 10-12 dientes internos y serrulaciones
mandibulares aisladas y en número de 3-5
(figs. G-H). Palpo maxilar alargado y con 3-5
órganos sensoriales en el ápice (fig. 1). Hipos-
tomio con el borde anterior sobrepasando la
altura de los dientes excepto los del ángulo.
Dientes poco desarrollados, con diente media-
no más corto que los dientes del ángulo (figs.
J-L). Setas hipostomiales en número de 4-5 de
cada lado. Disco del hipostomio con muy esca-
sos pelos aislados. Esclerito de la propata sub-
cuadrangular con dientes dispuestos indepen-
dientemente en una hilera y en número de
14-17 (fig. M). Cutícula larval desnuda. Bran-
quias con 3 lóbulos simples. Esclerito anal en

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

forma de X, sin verdaderos sostenes o débil-
mente insinuados, con pelos pero sin escamas
(fig. N). Anillo anal con 75-80 hileras de gan-
chos, con 13-15 ganchos cada una.

Material exammado: ARGENTINA: Tierra
del Fuego, Ushuaia, 1 larva, 1 pupa farate, 10-
IX-1983, col. Coscarón. Río Negro,
Bariloche, 18-1X-1984: larvas, pupas, Y y 3,
col. Coscarón. CHILE: Magallanes, Isla De-
ceit, 27-X1/3-X11-82: 19 929 y 13 Sd, col. D.
Lanfranco (en trampa Malaise juntamente
con 2 y d de Paraustrossmulium anthracinum,
Gigantodax bonorinorum y Gigantodax igniculum.

De todos los Prosimuliini neotropicales es,
sin lugar a dudas, Paraustrosimulium anthraci-
num la especie más afín con Cnesiamima atro-
parva, como lo indicaron Wygodzinsky y Cos-
carón 1973 a y b, al estudiar imagos y pupa.
Los caracteres aportados por la larva sirven
para reafirmar esta semejanza donde llaman
la atención las siguientes apomorfías en co-
mún: a) presencia de un modelo similar de
antena, con el tercer artejo mayor que la suma
de los basales, en que el segundo artejo es muy
corto y el tercero muy alargado; b) hiposto-
mio con dientes reducidos y borde proyectado
más allá del ápice de los dientes; c) reducción
de dentículos marginales de la mandíbula;
d) esclerito del cuello reducido y aislado de
los bordes del occiput. A las sinapomorfías
señaladas se sumarían las presentadas en pu-
pa tales como: e) capullo bien desarrollado y
de estructura compacta, anchamente oval;
f) branquias gruesas, septadas e insertadas en
un corto tronco en el tercio posterior del cuer-
po de la branquia; g) abdomen débilmente
esclerotizado; h) espinas terminales del abdo-
men cortas y puntiagudas; en imagos; 1) escle-
rito mediano de la genitalia del d en forma de
M en vista frontal, y j) dientes en ambas már-
genes de la mandíbula en la 9.

Esto consolidaría la hipótesis sobre la pre-
sencia de un antecesor común con Paraustrosi-
mulium, dando pie a la constitución de un gru-
po con ambos géneros afines en la región Neo-
tropical.

En relación con la fauna australiana, obser-
vamos como lo demostraron otros autores
(Wygodzinsky y Coscarón 1962, Dumbleton
1972), que Austrosimulvum es un género muy

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 69

¿ :

Fig. 1. Cnesiamima atroparva larva: A) aspecto general de larva; B) frontoclípeo; C) base del frontoclípeo y escleritos
cefálicos; D) y E) antenas: F) porción de antenas; G) ápice de la mandíbula; H) dentículos del margen de la mandíbula;
I) palpo maxilar; J) porción de base de la cabeza con hipostomio; K-L) borde anterior del hipostomio; M) esclerito de la
pseudo pata; N) esclerito anal; O) histoblasto branquial de pupa.

70

próximo a Paraustrosimulium, pero que tam-
bién lo es con Cnesiamima con quien existen
algunos caracteres, que ya fueron señalados
en común con Paraustrosimulium, como son en
larva el tipo de antena y disposición del hipos-
tomio, en pupa branquias robustas y capullo
bien formado. Existen además en común en-
tre Cnesiamima y Austrosimulium los siguientes:
a) ausencia de setas espiniformes en ápice de
R¡; b) presencia de filamentos respiratorios
en pupas. Con los elementos que disponemos
actualmente podemos decir que hay un grupo
básico Cnessamima, Paraustrosimulvium, Austrosi-
mulium con mayor afinidad entre ellos que con
los restantes Prosimuliini neotropicales y aus-
tralianos. Sin conocer mejor otros caracteres
de Austrosimulium no podemos decir que Cne-
siamima haya derivado de Austrosimulium O vi-
ceversa. Con la información actual es evidente
que Paraustrosimulium y Austrosimulium son los
que mayores autoapomorfías ostentan. En Pa-
raustrosimulium estas autoapomorfías son: pre-
sencia de setas espiniformes en el ápice de R; y
ausencia de filamentos respiratorios en bran-
quias; en Austrosimulvum son: presencia de es-
clerito anal semicircular y, especialmente por
un carácter de gran peso como es, la presencia
de pedisulco que es peculiar de la tribu Simu-
limi.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Volviendo hacia los posibles anteceso-
res neotropicales del grupo Cnesiamima-
Paraustrosimulium, consideramos que tiene
prioridad Cnesia sobre Gigantodax (este último
sugerido por Dumbleton 1973) en base a las
siguientes sinapomorfías: en larva: a) dientes
del hipostomio reducidos; b) reducción de
dentículos marginales de la mandíbula;
c) esclerito del cuello reducido y separado del
occiput; en pupa; d) pérdida de peines de
espinas de tergitos abdominales.

Las especies de “Cnephia” australianas (pro-
bablemente Prosimulium (Paracnephia) según
Crosskey 1969), están más emparentadas con
la fauna etiópica que con la neotropical, en
cambio las de Austrosimulium muestran un li-
naje más próximo con los géneros neotropica-
les, evidenciando que la fauna australiana tu-
vo contactos zoogeográficos con el viejo mun-
do y con la región neotropical. Si bien no esta-
mos en condiciones de afirmar que Cnesiama-
ma-Paraustrasimulium-Austrossmulium puedan
haber evolucionado en el continente antárti-
co, es bien evidente que si hay una estrecha
relación entre ellos y este continente debe de
haber sido la vía más importante de conexión.

BIBLIOGRAFIA

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(Diptera) of Africa and its islands. Bull. British. Mus.
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Dumbleton, L.J. 1972. The genus Austrosimulium Tonnoir
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New Zealand Fauna. New Zealand J. Sc. 15(4): 480-
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tralasian Simuliidae (Diptera) 11 Proceed. Linnean
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America (Diptera-Simuliidae). Pacific Insects 4(1):
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tribe Prosimuliini (Simuliinae, Simuliidae). Bull.
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nae, Simuliidae), Diptera. Amer. Mus. Novitates,
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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 71-78, 1985.

PARASITOS DE MOLA RAMSAY] (GIGLIOLI, 1883)
(PISCES: MOLIDAE) EN CHILE.

Parasites of Mola Ramsay (Giglioli, 1883)
(Pisces: Molidae) in Chile

CESAR VILLALBA S. y JACQUELINE FERNANDEZ B.*

RESUMEN

Se dan a conocer los parásitos encontrados en un ejemplar
de Mola ramsayi (Giglioli, 1883), capturado en Isla de
Pascua (275 109%0) y otro en el Golfo de Arauco
(37%00'S; 7320'0), Chile. En el ejemplar de Isla de Pas-
cua se encontraron los siguientes parásitos: DIGENEA:
Accacladium serpentulum Odhner, 1928, Accacladocoelium
macrocotyle (Diesing, 1858), Accacoelium contortum (Rudolp-
hi, 1819), y Odhnerium calyptrocotyle (Monticelli, 1893);
CESTODA: Gymmorhynchus (Molicola) horridus (Goodsir,
1841) y Nybelinia spp.; COPEPODA: Cecrops latreillii
Leach, 1816. Los parásitos encontrados en el ejemplar del
Golfo de Arauco son: MONOGENEA: Capsala martinierei
Bosc, 1811; DIGENEA: Accacoelium contortum (Rudolphi,
1819); CESTODA: Anchistrocephalus microcephalus (Ru-
dolphi, 1819); COPEPODA: Lepeophtheirus nordmanni
(Milne Edwards, 1840).

Todas las especies encontradas, con excepción de L.
nordmanm y Nybelinia spp. constituyen nuevos registros
para Chile. Este es el primer trabajo sobre parásitos de
peces de Isla de Pascua.

INTRODUCCION

La familia Molidae en Chile está representada -

por solamente 2 especies, Mola ramsay: (Giglio-
li) y Ranzamia laevis Pennant, existiendo en la

“Departamento de Zoología, Fac. Cs. Biol. y Rect. Nat.,
Casilla 2407, Apartado 10, Universidad de Concepción.
Concepción - CHILE.

ABSTRACT

Parasites found in specimens of Mola ramsayi (Giglioli,
1883) from Easter Island (Isla de Pascua) (27%S; 109%0)
and Golfo de Arauco (37%00'S; 7320") ), Chile, are
reported. Parasites found in Easter Island are:
DIGENEA: Accacladium serpentulum Odhner, 1928,
Accacladocoelvum macrocotyle (Diesing, 1858), Accacoelium
contortum (Rudolphi, 1819) and Odhnerium calyptrocotyle
(Monticelli, 1893); CESTODA: Gymnorthynchus (Molicola)
horridus (Goodsir, 1841) and Nybelinia spp.; COPEPODA:
Cecrops latreili Leach, 1816. Parasites from Golfo de
Arauco are: MONOGENEA: Capsala martimerei Bosc,
1811; DIGENEA: Accacoelium contortum (Rudolphi, 1819);
CESTODA: Anchistrocephalus macrocephalus (Rudolphi,
1819); COPEPODA: Lepeophtheirus nordmanmi (Milne
Edwards, 1840).

Except L. nordmanna, all the species are new records for
Chile. This is the first report on Easter Island fish
parasites.

Keywords: Parasites, Easter Island, First Records, Mola
ramsay:, Chile, South Pacific.

literatura numerosos registros de captura de
la primera de estas especies, tanto en Chile

continental como en Isla de Pascua (De Buen,

1957, 1960; Bahamonde y Pequeño, 1975).
Sin embargo, la información sobre parásitos
de estas especies en Chile se remite al hallazgo
de Pennella cf. filosa Linneo, 1758 sobre un
ejemplar capturado en Zapallar (Atria, 1967)
y a la presencia de Lepeophtheirus nordmanni

12

(Milne Edwards, 1840) en Valparaíso, pero de
un hospedador desconocido (Stuardo, 1958).
Atria (1977) incluye a L. nordmanni en su lista
de copépodos asociados a organismos marinos
chilenos, señalando como posible hospedador
a M. ramsay?.

En este trabajo se dan a conocer los parási-
tos encontrados en 2 ejemplares de Mola ram-
say?, capturados en Chile Continental e Isla de
Pascua, aumentando de esta manera el conoci-
miento de los parásitos de los peces presentes
en aguas continentales e insulares chilenas.

MATERIALES Y METODOS

Los diferentes parásitos fueron recolectados
en 2 ejemplares de Mola ramsayi: Un ejemplar
de 78 cm de largo (longitud total) por 43 cm
de alto (a nivel de la aleta pectoral), capturado
en el Golfo de Arauco (37%00'S; 73%20'0), en
octubre de 1983; y otro, de 84 cm de largo
(longitud total) por 50 cm de alto (a nivel de la
aleta pectoral), capturado en Isla de Pascua
278 109%0), en marzo de 1984.

Los copépodos recolectados fueron fijados
en alcohol 70%. Monogeneos, digeneos y ces-
todes fueron fijados en formaldehido al 10%,
traspasados a alcohol 70%, teñidos con Hema-
toxilina de Harris o Carmín Acético de Semi-
chón y montados en Entellan o Bálsamo de
Canadá.

La identificación de los hospedadores se
realizó siguiendo los criterios de De Buen
(1957), quien señala para M. ramsay¡ la presen-
cia de 16 radios en la aleta caudal, de los cuales
12 se apoyan en las placas óseas marginales; en
la otra especie, M. mola, se cuentan solamente
12 radios, de los cuales 8 a 9 terminan en las
placas óseas marginales.

Los dibujos se hicieron con ayuda de una
cámara lúcida. Las medidas se realizaron con
un ocular micrométrico, entregándose en
mm, a menos que se indique lo contrario.

El material estudiado se encuentra deposi-
tado en el Museo Zoológico de la Universidad
de Concepción (MZUC,) y en la colección par-
ticular de los autores.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

RESULTADOS

Las especies parásitas encontradas en los
ejemplares de M. ramsayi y su frecuencia se
señalan en la Tabla 1.

MONOGENEA
Capsalidae Baird, 1853
Capsala martiniere: Bosc, 1811

(Fig. 1)

Se recolectó un ejemplar en la superficie cor-
poral de M. ramsay:, el cual se encuentra lige-
ramente deteriorado. Las medidas del ejem-
plar son: longitud 37, ancho máximo 40, fa-
ringe 4,0 x 2,8, diámetro de opistohaptor 13,3.

C. martinieres es una especie con característi-
cas cosmopolitas, habiendo sido encontrada
sobre Mola mola, tanto en los océanos Atlántico
como Pacífico. Tanto las medidas como las
características morfológicas coinciden con lo
señalado por diferentes autores para esta es-
pecie (Sproston, 1946; Price, 1962; Yamaguti,
1963; Threlfall, 1967).

DIGENEA
Accacoelidae Odhner, 1911
Accacladium serpentulum Odhner, 1928
(Fig. 2)

Se recolectó solamente un ejemplar en el in-
testino de M. ramsay de Isla de Pascua, sus
medidas son: longitud 10,5, ancho máximo
0,9, ventosa oral 0,5 X 0,7, ventosa ventral 0,5
Xx 0,6, faringe 0,20 x 0,19, testículos 0,59 x
0,39, ovario 0,31 Xx 0,43.

Su morfología general y medidas coinciden
con lo señalado por otros autores para esta
especie (Linton, 1940; Timon-David y Musso,
1970; Bray y Gibson, 1977).

Accacladium cuenta sólo con una especie: A.
serpentulum Odhner, de acuerdo con Bray y
Gibson, (1977) quienes señalan que A. mematu-
lum Noble y Noble, 1937 es sinónimo de la
especie antes mencionada. A. serpentulum es
cosmopolita, habiendo sido encontrada pre-
viamente en Mola mola en los océanos Pacífico,
Atlántico y Mediterráneo, principalmente en
el Hemisferio Norte.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

73

Tabla 1
Parásitos encontrados en Mola ramsay: en Isla de Pascua
y Golfo de Arauco, Chile, y sus cantidades

Parásitos

MONOGENEA

Capsala martimerer Bosc, 1811

DIGENEA

Accacladium serpentulum Odhner, 1928
Accacladocoelvum macrocotyle (Diesing, 1858)
Accacoelvum contortum (Rudolphi, 1819)
Odhnerium calyptrocotyle (Monticelli, 1893)

CESTODA

Anchistrocephalus microcephalus (Rudolphi, 1819)
Gymnorhynchus (Molicola) horridus (Goodsir, 1841)

Nybelinia spp.

COPEPODA
Cecrops latreilla Leach, 1816

Número de ejemplares

Isla de Pascua Golfo de Arauco

1 ón
9 ¿de

24 1

3 hs be

=> > 3000

> 100 =—
50 —=

6 Bu

7

Lepeophtheirus nordmann: (Milne Edwards, 1840) peo

Accacladocoelvum macrocotyle (Diesing, 1858)

(Fig. 3)

Se recolectaron 2 ejemplares en el intestino de
M. ramsay: de Isla de Pascua, cuyas medidas en
promedio son: longitud 5,6, ancho máximo
1,15, ventosa oral 0,39 x 0,32, ventosa ventral
0,90 x 0,97, testículos 0,51 X 0,40, diámetro
del ovario 0,30.

La morfología general de los especímenes
estudiados coincide con las características da- |
das por Linton (1940), Timon-David y Musso
(1971) y Bray y Gibson (1977) aunque el tama-
ño de los ejemplares es menor que el señalado
por dichos autores, aproximándose más a los
tamaños entregados por Timon-David y Mus-
so (op. cat) para sus ejemplares recolectados en
Mola mola del Golfo de Marsella.

Registros previos de A. macrocotyle, señalan
su presencia solamente en Mola mola del Océa-
no Atlántico y Mar Mediterráneo.

Accacoelium contortum (Rudolphi, 1819)
(Fig. 4 - 5)

Se recolectaron 24 ejemplares contraídos de la
faringe y branquias de M. ramsayi de Isla de
Pascua y 1 ejemplar relajado de la faringe de
M. ramsayi del Golfo de Arauco. Las medidas
de este último son: longitud 19,4, ancho máxi-
mo, 1,63, ventosa oral, 0,74, ventosa ventral
1,13, faringe 0,35 X 0,30, testículos 1,63 X
1,19, ovario 0,69 Xx 0,58.

Las medidas y características morfológicas
de los ejemplares coinciden con lo señalado
por otros autores para esta especie (Linton,
1898, 1940; Timon-David y Musso, 1971;
Bray y Gibson, 1977), aunque el pedúnculo
acetabular del ejemplar del Golfo de Arauco
es ligeramente mayor, lo que puede atribuirse
a su estado de relajación.

A. contortum es una especie de distribución
cosmopolita, presente en los océanos Atlánti-

74

co y Pacífico (Australia), habiendo sido en-
contrada previamente sólo en M. mola (Yama-
guti, 1971; Beumer et al., 1983).

Odhnerium calyptrocotyle (Monticelli, 1893)
(Fig. 6)

Se recolectaron 3 ejemplares en el intestino de
M. ramsayi de Isla de Pascua. Las medidas pro-
medio de los ejemplares son: longitud 4,7,
ancho máximo 1,08, ventosa oral 0,27 X 0,25,
ventosa ventral, 0,98 x 0,94, testículos 0,76 X
0,54 ovario 0,33 Xx 0,36.

Las características morfológicas de los
ejemplares concuerdan con lo señalado por
Linton (1940) y Bray y Gibson (1977), si bien el
tamaño es ligeramente menor que el señalado
por dichos autores.

O. calyptrocotyle es una especie de amplia
distribución, encontrándose en el Atlántico,
Mediterráneo y Pacífico en M. mola, curiosa-
mente la especie fue descrita originalmente
del ctenóforo Beroe ovata, presumiblemente
como metacercaria.

CESTODA
Triaenophoridae Lónnberg, 1889
Anchistrocephalus microcephalus (Rudolphi,
1819)

(Fig. 7)

Se recolectaron más de 3.000 ejemplares de
A. microcephalus en el intestino de M. ramsay!
del Golfo de Arauco, los cuales presentaba
escólices con o sin espinas y genitalia duplica-
da en algunas proglótidas, lo cual coincide con
las variaciones morfológicas señaladas por
Kennedy € Andersen (1982) para A. microce-
phalus de Mola mola. El rango de tallas de los
ejemplares fluctuaba entre 0,4 y 40 cm, pre-
sentando diferentes estados de desarrollo y
madurez.

A. microcephalus es cosmopolita, habiendo
sido encontrada en Mola mola en el Atlántico
Norte, Mediterráneo, Pacífico Norte y costas
de Nueva Zelandia (Robinson, 1959; Yama-
guti, 1959; Threlfall, 1967; Hewitt y Hine,
1972).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Gymnorhynchidae Dollfus, 1935
Gymnorhynchus (Molicola) horridus (Goodsir,
1841)

Se recolectaron numerosos plerocercoides de
G. (M.) horridus en el hígado de M. ramsayi de
Isla de Pascua. Algunos ejemplares fueron so-
metidos a digestión artificial para facilitar la
posterior observación del escolex y sus
trompas.

Esta especie se encuentra comúnmente en
el hígado de Mola mola del Pacífico (incluyen-
do Nueva Zelandia), encontrándose el estado
adulto en /surus ocyrhynchus glaucus (Robin-
son, 1959; Yamaguti, 1959; Hewitt y Hine,
1972).

Tentaculariidae Poche, 1926
Nybelima spp.

Se encontraron aproximadamente 50 larvas
de Nybelinia spp. en el intestino de M. ramsayi
de Isla de Pascua, pudiendo reconocerse la
existencia de por lo menos 2 morfotipos.

COPEPODA
Cecropidae Yamaguti, 1963
Cecrops latreilli Leach, 1816

(Figs. 8 - 9)

Se encontraron 2 machos y 3 chalimus de C.
latreilla adheridos a los filamentos branquia-
les de M. ramsay: de Isla de Pascua. Uno de los
adultos se encontraba en la parte superior de
la branquia ubicado perpendicularmente a los
filamentos branquiales, a diferencia del otro,
situado en la parte inferior, paralelamente a
los filamentos branquiales. Ambos ejemplares
estaban orientados de acuerdo con la direc-
ción del flujo de agua.

Las características morfológicas y medidas
de los ejemplares coinciden con lo señalado
por Yamaguti (1936) y Hewitt (1968).

Caligidae Dana, 1852
Lepeophtheirus nordmanni (Milne Edwards,
1840)

Se recolectaron 3 hembras, 3 machos y 1 hem-
bra inmadura de L. nordmanni de la superficie

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

corporal (cerca de la cabeza) de M. ramsay¡ del
Golfo de Arauco.

Las características morfológicas y el tamaño
de los ejemplares coinciden con lo señalado
por Hewitt (1971) y Kabata (1979).

L. nordmann: se describe normalmente co-
mo parásito de Mola mola, con una distribu-
ción cosmopolita coincidente con lo de su hos-
pedador, la que incluye el Océano Atlántico
(costa europea, norteamericana y africana),
Océano Pacífico (Japón, Norteamérica, Nueva
Zelandia) y Mediterráneo (Kabata, 1979).

Material depositado:

Accacladocoelium macrocotyle (Diesing, 1858)
MZUC 6952; Accacoelvum contortum (Rudolphi,
1819): MZUC 6953 a MZUC 6962; Odhnerium
calyptrocotyle (Monticelli, 1893): MZUC 6963;
Anchistrocephalus microcephalus (Rudolphi,
1819): MZUC 6964 (un frasco con aproxima-
damente 100 ejemplares); Gymnorhynchus (Mo-
licola) horridus (Goodsir, 1841): MZUC 6965 a
MZUC 6974; Cecrops latreilli Leach, 1816:
MZUC 6975; Lepeophtheirus nordmanni (Milne
Edwards, 1840): MZUC 6976, MZUC 6977.

DISCUSION

Todas las especies encontradas parasitando a
M. ramsayi en aguas chilenas, con excepción de
L. nordmann: y Nybelinia Spp., constituyen nue-
vos registros para Chile. El hallazgo de A. ser-
pentulum, A. macrototyle, A. contortum, O. calyp-
trocotyle, G. (M.) horridus, Nybelima spp. y C.
latreillii en M. ramsay: de Isla de Pascua, consti-
tuye el primer registro de parásitos de peces
de dicha isla.

El hallazgo de L. nordmann: en M. ramsay
del Golfo de Arauco permite ratificar su pre-
sencia en Chile y establecer su verdadero hos-
pedador, ya que dicha especie sólo había sido

7

mencionada por Milne Edwards (1840, fide
Stuardo, 1958) como L. ornatus (sinónimo de
L. nordmanni) de un hospedador desconocido,
proveniente de Valparaíso. Atria (1977) seña-
la como posible hospedador de dicha especie a
M. ramsaya, basándose seguramente en la espe-
cificidad existente entre L. nordmanni y Mola
spp.

Es importante destacar las diferencias entre
los parásitos encontrados en M. ramsayi del
Golfo de Arauco e Isla de Pascua, en particu-
lar lo referente a la presencia de digeneos
intestinales. En el ejemplar de Isla de Pascua,
se encontraron 7 digeneos netamente intesti-
nales, mientras que en el de Golfo de Arauco,
no se encontró ninguno, pero sí una gran can-
tidad de cestodes adultos (sobre 3.000 indivi-
duos) que ocupaban completamente el intesti-
no del pez, atribuyéndose esto posiblemente a
la existencia de algún fenómeno de exclusión
entre cestodes y digeneos. Threlfall (1967), en
Mola mola de la región de Terranova, Canadá,
encuentra tanto digeneos como cestodes (per-
tenecientes a las mismas especies aquí encon-
tradas) en el intestino de 3 ejemplares, sin
embargo, las cantidades de A. microcephalus
encontradas por él son bastante bajas (120,
141 y 202 individuos) en relación con las en-
contradas por nosotros.

Por último, es importante llamar la aten-
ción sobre la escasa información existente de
parásitos de M. ramsayi, no así de M. mola,
debido probablemente a problemas en la co-
rrecta identificación taxonómica de este pez.

AGRADECIMIENTOS

Se agradece a la señora Graciela Hucke Atan
por la ayuda brindada a los autores en la reco-
lección del material en Isla de Pascua. De igual
manera se agradecen las valiosas sugerencias
de los correctores anónimos de este trabajo.

56 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

1. Capsala martimierei Bosc, 1811. 2. Accacladium serpentulum Odhner, 1928. 3. Accacladocoelium macrocotyle (Diesing, 1858).
4. Accacoelvum contortum (Rudolphi, 1819) (ejemplar relajado).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

AAA
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5 A
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NOS
NS

5. Accacoelium contortum (Rudolphi, 1819) (ejemplar contraído). 6. Odhnervum calyptrocotyle (Monticelli, 1893). 7. Anchistro-

cephalus microcephalus (Rudolphi, 1819) (escólice). 8-9. Cecrops latreillii Leach, 1816 (macho). 8. Vista dorsal. 9. Vista
ventral.

78

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 79-114, 1985.

BRIOZOOS MARINOS CHILENOS V. TAXA NUEVOS O POCO CONOCIDOS

Chilean marine bryozoans V. New or poorly known taxa

HUGO I. MOYANO G.*

RESUMEN

Se describen y redescriben especies de briozoos de mues-
tras antárticas, magallánicas, del centro de Chile y del
archipiélago de Juan Fernández. Se propone el nuevo
género Dendroperistoma gen. nov. para acomodar a Cribrali-
na projecta Waters, y las nuevas especies Galeopsis juanfer-
nandensis sp. n., Galeopsis megaporus sp. n., Andreella polypo-
ra sp. n., Fenestrulina horrida sp. n. y Celleporina asymmetrica
sp. n.

Como nuevos para la briozoofauna chilena se señalan
a: Chorizopora brongniarti (Audouin), Micropora mortenseni
Livingstone y Fenestrulina pulchra Gordon.

Se redescribe e ilustra a Andreella uncifera (Busk), A.
megapora Moyano y Melgarejo, A. umbonata (Busk), Galeop-
sis reteporelliformis (Moyano) y G. pentagonus (D'Orbigny).

INTRODUCCION

Después de los trabajos compilatorios sobre
las faunas chilenas de Bryozoa de las últimas
décadas, Viviani, 1969, Moyano, 1982, 1983,
se hace necesario agregar nuevos hallazgos
referentes a especies nuevas O a la proposición
de taxones supraespecíficos nuevos.

Al número total de especies que alcanzaban
a 267 (Moyano, 1983) se deben añadir otras de

*Departamento de Zoología Universidad de Concepción,

Casilla 2407, Concepción, Chile.

SUMMARY

One new genus and five new species from Antarctica,
Magellanic region, Central Chile and the Juan Fernandez
Archipelago are described: Dendroperistoma n. gen. (type-
species=Cribrilina projecta Waters), Galeopsis juanfernan-
densis sp. n., Galeopsis megaporus sp. n., Andreella polypora
sp. n., Fenestrulina horrida sp. n. and Celleporina asymmetrica
sp. n.

New records for the Chilean bryozoan fauna are: Cho-
rizopora brongmiarti (Audouin), Micropora mortenseni Li-
vingstone and Fenestrulina pulchra Gordon.

The species Andreella uncifera (Busk), A. megapora
Moyano e: Melgarejo, A. umbonata (Busk), Galeopsis penta-
gonus (D'Orbigny) and G. reteporelliformis (Moyano) are
redescribed and illustrated.

Keywords: Bryozoa. Systematics. South eastern Pacific.
Antarctica. Juan Fernandez Archipelago.

los archipiélagos de Juan Fernández y Madre
de Dios. Y también, por otra parte, añadir un
nuevo género de Cheilostomata para la Antár-
tida.

Los nuevos taxones han resultado tanto de
la completación de antecedentes de especies
consideradas desde hace tiempo como proba-
blemente nuevas, como de un reciente proyec-
to de investigación en curso sobre los briozoos
del Pacífico sudoriental patrocinado por la Di-
rección de Investigación de la Universidad de
Concepción. En éste se analizan principal-
mente muestras recogidas por los buques de

80

investigación Anton Bruun, Eltanin y otros,
especialmente desde Chile Central hasta el
Golfo de Panamá.

El estudio de muestras de Juan Fernández
está revelando una fauna estrechamente em-
parentada con la presente en el área de Nueva
Zelandia monografiada recientemente por
Gordon (1984, 1985). En ella aparecen nuevas
especies para la fauna chilena, otras nuevas
para la ciencia, géneros previamente no consi-
derados para nuestra fauna, y también una
familia de briozoos no señalada con anteriori-
dad. La presente comunicación tiene por obje-
to describir los nuevos taxones ya identifica-
dos como parte del trabajo de investigación
antes aludido, así como otros ajenos al proyec-
to cuya determinación recién se ha logrado.

MATERIALES Y METODOS

Los nuevos hallazgos se basan en las muestras
siguientes, todas de las colecciones del Depar-
mento de Zoología de la Universidad de Con-
cepción (MZUC), excepto donde se indica lo
contrario. En la sección Material estudiado
serán aludidas por la combinación de letras
que las encabezan.

a) Antártida:
Dendroperistoma gen. nov. D. projecta (Waters):

Mar de Ross; 75% 00'S; 169% 28'E, 1967, 124-
329 m.

b) Magallanes:

ba. Fenestrulina horrida sp. n.: Isla Guarello,
marzo, 1985; 10-15 m. Col. M. Muñoz; sustra-
to: braquiópodo.

bb. Andreella uncifera: Bahía Scotchwell, 55%
28'S; 68” 07'W, 1980, 25 m, col. A. Sporer;
sustrato: Aspidostoma giganteum.

bc. Andreella umbonata: Estrecho de Magalla-
nes, 1976. Sublitoral, col. A. Gallardo; sustra-
to: piedras.

bd. Andreella megapora: Isla Guarello, 50% 23'S;
72% 50"W, sublitoral, 1976, col. A. Larraín;
sustrato: piedras.

be. Galeopsis pentagonus: Bahía Hale, cerca del

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Golfo de Penas, 40-60 m, 1972. Col. H.
Moyano.

c) Chiloé:

Andreella polypora sp. n.: Al sur de Chiloé; lan-
ce 136, buque Aku Maru, 12 junio 1979; sus-
trato: volútido. (Colección del Museo Nacio-
nal de Historia Natural de Santiago).

d) Bahía de Concepción:

Andreella megapora: Tomé, 36" 37'S; 722 57'W.
1975, col. H. Moyano; sustrato: piedra.

e) Archipiélago de Juan Fernández:

ea. G. reteporelliformis: Cima de un guyot cerca
de Más a Tierra, 1964, 220-280 m, sustrato:
piedras.

eb. Galeopsis juanfernan-
densis Sp. n.

Galeopsiss megaporus

: USARP ELTANIN

sp. n. ID6) SESZUS
Fenestrulina pulchra : 33% 45'S
Macropora mortenseni : 80 41'W
Celleporina asymme-

trica Sp. n. - 79-91 m

(Colección Smithsonian Sorting Center,

USA).

ec. Galeopsis juanfernan-

densis sp. n.
Galeopsiss megaporus

: Más a Tierra

Sp. Nn. : 1964; 60 m

Fenestrulina pulchra : Colector

Celleporina asymme-

trica Sp. N. : H.I. Moyano
ed. Chorizopora brong- :

niarti SEPBOP/A. BRUUN

ee.

33% 37'18”S; 78% 50'20”W; 26-29 m.
(Colección Smithsonian Sorting Center,

USA).

Celleporina asymme-

trica Sp. n.

Galeopsis juanfernan-
densis Sp. n.
Galeopsiss megaporus
sp. n.

: SEPBOP/A. BRUUN

: 337 36,48

: 78% 47,8 W

(sin profundidad indicada).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

(Colección Smithsonian Sorting Center,
USA).

ef. Galeopsis juanfernan-
densis Sp. n.
Galeopsiss megaporus
Sp. N. : 10/12/1965; 126 m
(Colección Museo Nacional de Historia
Natural).

: Más a Tierra

Todas las especies son ilustradas con microfo-
tografías al microscopio electrónico de barri-
do (SEM). Estas fueron realizadas en el Labo-
ratorio de Microscopía Electrónica de la Uni-
versidad de Concepción en muestras previa-
mente hervidas en Hipoclorito de Sodio, seca-
das de alcohol 96% y metalizadas con oro u
oro y cobre.

El material tipo queda depositado en el Mu-
seo de Zoología de la Universidad de Concep-
ción (MZUC), excepto algunos paratipos de
las especies Galeopsis juanfernandensis sp. n; Ga-
leopsis megaporus sp. n.; Celleporma asymmetrica
sp. n. que irán a la Smithsonian Institution y al
Museo Nacional de Santiago, y el holotipo de
Andreella polypora sp. n. que también queda en
el Museo Nacional antes aludido.

RESULTADOS

A. POSICION SISTEMATICA DE LOS
TAXA CONSIDERADOS

Aquí se seguirá el criterio de Gordon (1984)
referente a la organización de la clase Gymno-
laemata en órdenes, subórdenes, super-
familias y familias.

Clase GYMNOLAEMATA
Orden CHEILOSTOMATA
Suborden ANASCA
Superfamilia MICROPOROIDEA

Familia MICROPORIDAE

1. Micropora mortensen: Livingstone

2. Andreella polypora sp. n.

3. Andreella megapora Moyano y Melgarejo

4. Andreella umbonata (Busk)
5. Andreella uncifera (Busk)

81

Suborden ASCOPHORA
Superfamilia CRIBRILINOIDEA
Familia CRIBRILINIDAE

6. Dendroperistoma projecta (Waters) n. comb.

Superfamilia SCHIZOPORELLOIDEA
Familia MICROPORELLIDAE

7. Fenestrulina pulchra Gordon
8. Fenestrulina horrida Sp. N.

Superfamilia HIPPOTHOOIDEA
Familia CHORIZOPORIDAE

9. Chorizopora brongniarti (Audouin)

Superfamilia CELLEPOROIDEA
Familia CELLEPORINIDAE

10. Celleporina asymmetrica sp. n.

11. Galeopsis pentagonus (D'Orbigny)
12. Galeopsis reteporelliformis (Moyano)
13. Galeopsis juanfernandensis sp. n.
14. Galeopsis megaporus Sp. n.

B. DESCRIPCIONES TAXONOMICAS
Género Maicropora Gray, 1848

Diagnosis: Zoario generalmente incrustante.
Zooides aplastados. Pared frontal membrano-
sa; criptocisto completo, con uno o más pares
de opesíulas laterales y con poros abundantes
en toda su superficie. Abertura semicircular
de borde proximal recto. Ovicela endozoecial,
sobresaliente. Avicularias interzoeciales trian-
gulares con barra calcárea articular completa.

Especie tipo: Flustra coriacea Esper, 1791

Macropora mortenseni Livingstone, 1929

Lám. VII, Figs. 1-3

Micropora mortenseni Livingstone, 1929:61.
Gordon, 1984:53, Lám. 15, C.D.

Micropora lunipunctata ? Maplestone, 1901.
Micropora coriacea (Johnston): Marcus,
1921:101, Fig. 4; Moyano, 1983:20.

82

Diagnosis: Zoario incrustante, unilaminar,
Zooides en quincunx, aplastados y de pared
frontal deprimida; aproximadamente hexa-
gonales; abertura semicircular, un poco más
ancha que larga, sin espinas, levemente di-
mórfica pues en los zooides ovicelados es pro-
porcionalmente más grande; bordes zoeciales
definidos por un surco estrecho y poco pro-
fundo; criptocisto completo, granuloso, irre-
gularmente perforado centro-proximal.
mente, deprimido por detrás de la abertura y
descendente hacia las dos opesíulas laterales,
con una opesíula accesoria semilunar, estre-
cha, de concavidad proximal y de bordes in-
ternos dentados. Ovicela inmersa pero promi-
nente, lisa; avicularias interzoeciales, triangu-
lares prominentes, cuya mandíbula apunta lá-
tero-distalmente.

Material estudiado: Varios trozos unilaminares,
que incrustan conchas y similares provenien-
tes de la Isla de Más Afuera (muestra eb). Otro
incrustante sobre conchas obtenido en Más a
Tierra (muestra ec).

Observaciones: Los ejemplares estudiados con-
cuerdan plenamente con la descripción y
microfotografías SEM de otros del área de las
Kermadec (Gordon, 1984). Existen, no obs-
tante, pequeñas diferencias, pues los ejempla-
res del área neozelandesa son proporcional-
mente más cortos y anchos, al menos al com-

parar nuestros ejemplares con las fotografías'

dadas por Gordon (op. cit. lám. 15, Fig. C). La
presencia de la opesíula accesoria semilunar,
definitoria de esta especie confirma la deter-
minación, aunque también podría tratarse de
Macropora lunipunciata Maplestone, 1901 del
Eoceno superior de Victoria Australia, según
lo señala Gordon (op. cit.). Por el momento y
en ausencia de la especie fósil se considera
aquí que los ejemplares de Juan Fernández
pertenecen a M. mortensem Livingstone. Cual-
quiera que sea el caso, la especie de Juan Fer-
nández indica el parentesco de esta briozoo-
fauna con la del área australiana.

Distribución: Area de Nueva Zelandia (Livings-
tone, 1929) Kermadec Ridge (Gordon, 1984)
y archipiélago de Juan Fernández.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.
Género Andreella Jullien, 1888

Diagnosis: Zooides aplastados; criptocisto com-
pleto con dos o más opesíulas laterales; aber-
tura zoecial de borde distal arqueado y prox1-
mal subrecto con o sin espinas látero-orales.
Ovicela hiperestomial: avicularias epizoeciales
proximales sobre el criptocisto y comunicadas
con el celoma subyacente; mandíbula avicu-
larial articulada sobre cóndilos, sin barra
transversal en ella. Con dietelas látero-basales.

Especie tipo: Micropora uncifera Busk, 1884

Andreella polypora sp. n.
Lám. IX, Figs. 1, 5, 6

Diagnosis: Zoario incrustante, café amarillen-
to, unilaminar, pluriserial. Zooides grandes:
600-800 micrones de largo por 300-500 mi-
crones de ancho, de contorno irregularmente
hexagonal; abertura casi tan larga como an-
cha, de borde distal arqueado y proximal su-
brecto, sin espinas; criptocisto completo con
dos a 4 opesíulas a cada lado. Avicularia epi-
zoecial ubicada proximalmente sobre el crip-
tocisto, hemisférica, de contorno circular a
ovalado, con mandíbula triangular angosta di-
rigida distal o látero-distalmente; la cámara
avicularial mide entre 150 y 200 micrómetros
de diámetro y la mandíbula unos 100 micró-
metros de largo. Ovicela hiperestomial, globo-
sa, de superficie finamente granulosa, de unos
250 micrómetros de largo por 300 de ancho.

El nombre de la especie hace alusión a la
presencia de varias opesíulas a cada lado del
criptocisto a diferencia de todas las otras espe-
cies conocidas.

Material estudiado: Un zoario que incrusta el
interior de una concha de Volutidae (proba-
blemente Cymbiola sp.), el Holotipo, que se
depositará en el Museo Nacional de Historia
Natural de Santiago de Chile al que pertenece
el material (muestra c). Un trozo de éste se
declara Esquizotipo MZUC 7147 y se deposita
en el Museo Zoológico de la Universidad de
Concepción.

Observaciones: Esta especie cae claramente
en la diagnosis de Andreella Jullien por presen-
tar criptocisto completo, ovicela hiperestomial

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

y por poseer una avicularia proximal montada
sobre el criptocisto. Difiere de las otras espe-
cies por presentar varias opesíulas a cada lado,
las que parecen derivar de la tabicación de una
gran opesíula original como la de A. uncifera O
A. megapora (Moyano y Melgarejo, 1978). Esta
tendencia a dividir la gran opesíula inicial ya
se observa en las otras especies por la presen-
cia de dentículos internos en ella. Difiere ade-
más de A. uncifera y A. umbonata por carecer de
espinas látero-orales y por presentar una su-
perficie ovicelar externa homogénea. Con es-
ta especie son cuatro las del género, todas las
cuales son claros integrantes de la fauna ma-
gallánica. De todas, la única que alcanza el
centro de Chile es Á. megapora.

Distribución: Area de Chiloé, sobre gastró-
podos.

Andreella uncifera (Busk, 1884)
ams: 1x0: Xx -000

Maicropora uncifera Busk, 1884: 71, lám. XV, 7;
Calvet, 1904:20; D'Hondt y Redier 1977:225,
lám. 1, 4-6.

Andreella uncifera (Busk): Jullien, 1888:80,
láms. IV, 9; XIV, 1-3. Moyano, 1974:12, Fig.
26; López-Gappa, 1981: 28, lám. IH, 1, 2.

Diagnosis: Zoario incrustante, unilaminar,
pluriserial. Zooides irregularmente hexago-
nales, aplastados excepto por las ovicelas y
avicularias sobresalientes. Abertura semi-
circular más ancha que larga, con dos espinas
látero-distales; criptocisto completo, granulo-
so al igual que el resto de las estructuras zoe-
ciales, provisto de dos grandes opesíulas late-
rales reniformes que llegan a medir tanto co-
mo la anchura oral. Ovicela hiperestomial,
subesférica levemente granulosa, con un re-
borde calcáreo marginal notable. Avicularia
proximal, epizoecial, triangular, dirigida late-
ralmente e inclinada distalmente tendiendo a
una cierta asimetría.

Material estudiado: Varias colonias que incrus-
tan la base de una gran colonia de Aspidostoma
giganteum, provenientes de archipiélagos al

83

sur del Canal Beagle en el extremo sur de
Chile (muestra bb).

Observaciones: Los ejemplares estudiados con-
cuerdan con los otros descritos de varias regio-
nes del Pacífico y Atlántico sur como se puede
observar en las láminas de este trabajo. Con-
cuerda también con las ilustraciones fotográfi-
cas de D'Hondt y Redier (1977) y López-
Gappa (1981), aunque existen ligeras diferen-
cias en el tamaño de las opesíulas.

Distribución: especie típica de la región Maga-
llánica- sensu Moyano, 1982, encontrándose
desde los archipiélagos australes de Chile, pa-
sando por la costa patagónica argentina y
Tristao da Cunha hasta Kerguelen.

Andreella umbonata (Busk, 1854)
Lams. EX, 4; X, 1-2

Membranipora umbonata Busk, 1854:57, lám.
LXXIIL, 6, 7.

Andreella patagonica López-Gappa, 1981:28,
lám. II, 9, 4.

Andreella umbonata (Busk): Moyano, 1982:93,
2:

Diagnosis: Zoario incrustante, unilaminar y
multiserial, blanco a traslúcido. Zooides apla-
nados con gran eminencia de las avicularias
proximales. Abertura subcircular más ancha
que larga con dos fuertes espinas látero-
distales; criptocisto completo, granuloso, con
dos opesíulas circulares a ovaladas o subreni-
formes, rodeadas por un halo calcáreo liso.
Ovicela hiperestomial, cuadrangular de ectoe-
cio no completo y entoecio central granuloso.
Avicularia muy sobresaliente de contorno
subcircular, dirigida hacia arriba y proximal-
mente, en forma ocasional desplazada látero-
proximalmente donde hay ovicelas; con man-
díbula triangular.

Material estudiado: varios zoarios pequeños in-
crustantes de piedras del sublitoral en la costa
nororiental del Estrecho de Magallanes
(muestra bc).

Observaciones: Esta especie fue originalmente
descrita como Membranipora umbonata por

84

Busk en 1854 en el Catálogo de los Bryozoa en
el British Museum. En ese trabajo se dice que
la especie habita Port Jackson, Australia, pero
la etiqueta que tienen las muestras estudiadas
por Busk depositadas en el British Museum
señala claramente Estrecho de Magallanes.
Esto es confirmado por las muestras aquí estu-
diadas que son idénticas a las del British Mu-
seum. Recientemente López-Gappa, 1981,
describió a esta especie como nueva bajo el
nombre de Andreella patagonica, pero la obser-
vación de las fotografías que incluye en la des-
cripción, aunque muestran ejemplares con
opesíulas más grandes que las del Estrecho de
Magallanes, indica que son la misma especie.

Distribución: Estrecho de Magallanes y Costa
sur de Argentina.

Andreella megapora Moyano y Melgarejo, 1974
Láms. IX, 2; X, 3-4

Andreella megapora Moyano y Melgarejo, 1974:
170, figs. 4, 5.

Diagnosis: Zoarios, incrustantes, unilaminares
y multiseriales, blanquecinos. Zooides subhe-
xagonales, aplastados. Abertura subcircular
de bordes distal y proximal arqueados y gra-
nulares; criptocisto completo, granular, con
dos inmensas opesíulas más largas que anchas,
generalmente con una saliente interna en uno
de sus lados. Ovicela hiperestomial, granulo-
sa, subesférica cuya superficie muestra una
sola capa calcárea externa. Avicularia peque-
ña triangular alargada, proximal y dirigida
distalmente.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Material estudiado: El holotipo MZUC 9806
proveniente de la Bahía de Concepción en el
centro de Chile; un par de paratipos prove-
nientes de la isla Guarello en el extremo sur de
Chile MZUC 9653 (muestra bd y d, respectiva-
mente). Además se ha observado a esta especie
incrustando caparazones de crustáceos decá-
podos obtenidos del borde de la plataforma
continental o del talud en Chile Central.

Observaciones: Esta especie está claramente
mucho más emparentada con A. polypora sp. n.
que con A. uncifera o A. umbonata, por carecer
de espinas laterorales, por el tamaño de las
opesíulas y por la ovicela que en ambas pre-
senta al exterior una sola capa calcárea pareja
y no dos como en las otras dos. No se podría
decir cuál de las dos es categóricamente más
primitiva, porque ambas parecen presentar
caracteres derivados, como la pequeñez de la
avicularia en A. megapora y la multiplicación de
las opesíulas en A. polypora sp. n. Lo que une a
las cuatro es tener un mismo tipo de avicula-
ria: que carece de la barra articular completa,
que sí está presente en las especies de Micropo-
ra y que se desarrolla en la parte proximal del
criptocisto zoecial a través del cual se conecta
con el celoma subyacente mediante séptulas
simples. El género Andreella parece estar más
relacionado con Caleschara que con Micropora
en razón del enorme desarrollo de las opesíu-
las; se diferencian, sin embargo, por la caren-
cia de avicularias en Caleschara.

Distribución: Según lo indicado en material es-
tudiado la especie se encuentra desde Chile
Central hasta Magallanes y desde el interma-
real a la parte superior del talud continental
incrustando sustratos inertes y vivos.

Clave para las especies de Andreella Jullien.

1. Con una opesíula a cada lado ...........

Con varias opesíulas a cada lado. Avicularia circular de mandíbula triangular larga y

angosta dirigida distal u oblicuamente ..

2. Opesíulas reniformes, alargadas, grandes

AAA E EIN. MUA A. polypora sp. n.

(Lám. IX, 1, 5, 6.)

Opesíulas pequeñas, circulares, ovaladas a subreniformes. Zooides muy calcificados;
avicularias circulares, sobresalientes, de mandíbula triangular larga dirigida hacia arriba

y proximalmente

e... ... .. . 0... 0... 0... 0... 0... .<..<..<..o.

MS A ÍA A. umbonata (Busk)

(Láms. IX, 4; X, 1, 2.)

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

85

3. Avicularias grandes, transversales, muy sobresalientes de mandíbula triangular larga

01D 010-010 10:00 05000 00 0 040 O O DO OOO. ro oooO ooo 0 no: o

a OS A. uncifera (Busk)

(Láms, IX, 3; X, 5, 6.)

Avicularia más pequeña, circular, de mandíbula triangular dirigida distalmente

Po... o... +... +... o... os...

Dendroperistoma gen. nov.

Diagnosis: Cribrilinidae de zoario incrustante.
Zooides algo lageniformes; pared frontal pe-
ricística formada por costillas radiantes sepa-
radas por filas de poros; gimnocisto marginal
poco desarrollado; área oral prolongada en
un peristomas formado por dos gruesos tron-
cos latero-distales ramificados y por proyec-
ciones verticales de la barra oral proximal.
Avicularias interzoeciales pequeñas. Ovicela
desconocida. Con dietelas marginales.

El nombre del género alude a la presencia
de un peristoma formado a partir de espinas
ramificadas.

Especie tipo: Cribrilina projecta Waters, 1904.

Dendroperistoma projecta (Waters, 1904)
comb. n.
Lám. VIII; figs. 4, 6.

Cribrilina projecta Waters, 1904:41; lám. II,
figs. 14 a-d.

Cribrilina projecta: Thornely, 1924:10; Andro-
sava, 1972:336, fig. 12; Moyano, 1984:54,
figs. 11-13, 27-29, 32.

Observaciones: Cribrilina projecta es una especie
antártica claramente diferente de los otros cri-
brilínidos allí existentes como de los otros de
los continentes australes. Ya Hastings (1964)
había señalado esta situación indicando que
no era congenérica con Reginella muy bien
representada en el área de Australia y Nueva
Zelandia. Por otra parte, si se la compara con
Cribrilina se advierte que tampoco encaja en
ella en razón de la estructura de su peristoma.
En realidad el nuevo género se justifica por la
estructura peristomiana que no existe en nin-
gún otro cribrilínido reciente, ni coincide con
las complejas estructuras de las formas cretáci-
das estudiadas por Lang (1921) y Larwood

o orincilo A. megapora Moyano y Melgarejo.

(Láms. IX, 2; X, 3, 4.)

(1969). Aparentemente la especie tipo carece
de ovicela, pues no ha sido señalada por Wa-
ters (1904), Androsova (1972) ni por Moyano
(1983).

Las figuras incluidas se basan en material
de la muestra a.

Género Fenestrulina Jullien, 1888

Diagnosis: zooides convexos; pared frontal
perforada por los bordes y/o en su parte cen-
tral; abertura semicircular, de borde proximal
recto, con o sin espinas a su alrededor; asco-
poro frontal semilunar de posición variada;
poros frontales estrellados, cribados o sim-
ples. Ovicela hiperestomial con poros margl-
nales; sin avicularias; con dietelas.

Especie tipo: Cellepora malusú Audouin, 1826.

Fenestrulina horrida sp. n.
Lám. V, figs. 1-6.

Diagnosis: zoario incrustante, unilaminar,
blanquecino o cristalino transparente. Zooides
ovalados, convexos, separados por surcos pro-
fundos. Pared frontal con poros marginales
no estrellados ni cribados; ascoporo ovalado
de borde interior liso. Ovicela hiperestomial
grande, más larga que ancha. Toda la superfi-
cie frontal y ovicelar cubierta por elevaciones
irregulares aplastadas, digitadas, ocasional-

mente cilíndricas que dan a todo el conjunto

una apariencia fuertemente híspida.
El nombre científico alude al aspecto exte-
rior de la especie.

Material estudiado: Dos zoarios yue crecen so-
bre conchas del braquiópodo Magellaniía sp.
Holotipo MZUC 7175 y un Paratipo MZUC
7176 (muestra ba).

Observaciones: Esta especie tiene una aparien-

86

cia semejante a las de Chorizopora ferocissima
Gordon y Lagemipora ferocissima Gordon guar-
dando las correspondientes distancias genéri-
cas y familiares. Por sus proyecciones calcá-
reas superficiales no puede compararse con
otras especies de Fenestrulina del área magallá-
nica al menos. En los dos únicos zoarios exis-
tentes, no se observaron poros estrellados o
cribados descritos en la literatura o como los
que se aprecian en la lámina VII, 1-3, para F.
pulchra. A pesar de ello, la especie puede ser
adscrita al género Fenestrulina por carecer de
avicularias y por tener la pared frontal perfo-
rada especialmente por sus bordes laterales.

Distribución: Archipiélago Madre de Dios en el
sur de Chile.

Fenestrulina pulchra Gordon, 1984
Lám. VIII, figs. 1-3.

Fenestrulina malusu pulchra Gordon, 1984: 107,
lám. 41, fig. E.

Diagnosis: Colonia incrustante, blanca, unila-
minar, pluriserial. Zooides convexos, separa-
dos por surcos profundos; abertura semicir-
cular, de borde proximal recto, casi tan ancha
como larga, no rodeada por espinas; frontal
con poros grandes en dos corridas entre asco-
poro y borde apertural; cada poro ocupado
por un retículo calcáreo denso y finamente
perforado (como el que cierra la abertura de la
caja de resonancia en un laúd). Ascoporo cen-
tral, semilunar, levemente levantado en los
ejemplares estudiados. Ovicela hiperestomial
imperforada con poros marginales notorios
separados por trabéculas.

Material estudiado: Varias colonias que incrus-
tan tubos de poliquetos provenientes de la isla
de Más Afuera y otros de Más a Tierra igual-
mente incrustantes (muestras eb y ec).

Observaciones: Se ha considerado aquí que este
taxón merece el rango de especie y no de
subespecie en la cual su autor lo había coloca-
do; esto en razón de sus claras diferencias con
F. malusú de Europa, especialmente en lo que
se refiere a su carencia de espinas orales y
sobre todo por sus extraordinarios poros

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

frontales cribados. Los ejemplares de Juan
Fernández aquí estudiados concuerdan en ge-
neral con los de las Kermadec, aunque difie-
ren al ser levemente mayores, ca. 0,600 mm de
largo, y en la mayor abundancia de poros cri-
bados en los márgenes zoeciales. La mayor
diferencia está en la plataforma en la que se
encuentra el ascoporo en los ejemplares de las
Kermadec, la que no se desarrolla en los de
Juan Fernández. Esta diferencia no parece ser
suficiente como para considerarla por el mo-
mento como una especie o subespecie dife-
rente.

Distribución: Región de las Kermadec y Nueva
Zelandia (Gordon, 1984); archipiélago de
Juan Fernández.

Género Chorizopora Hincks, 1880

Diagnosis: zoario incrustante. Zooides bien de-
finidos, separados, ligados entre sí por exten-
siones tubulares que radian de todo su contor-'
no. Pared frontal holocística. Abertura semi-
circular, con o sin espinas. Con quenozooides
interzoeciales unidos a otros o a autozooldes O
a avicularias por prolongaciones tubulares,
que llevan una opesia breve frontalmente.
Avicularias interzoeciales unidas por prolon-
gaciones tubulares a los otros miembros de la
colonia.

Especie tipo: Flustra brongniarti Audouin,
1828.

Chorizopora brongmarti (Audouin, 1826)
Lám. VII, figs. 4-6

Flustra brongniartú Audouin, 1826:240.
Chorizopora brongmartu: Hincks, 1880:224,
lám. 32, figs. 1-4; Osburn, 1952: 279; Powell,
1957:252, fig. 26; Hayward y Ryland,
1979:240, fig. 103; Gordon, 1984:113, lám.
44, C.

Diagnosis: Zoario incrustante, aplastado, trans-
lúcido, reticulado. Zooides interconectados
por túbulos; pared frontal convexa, ocasional-
mente carenada, sin poros frontales ni margi-
nales, ni espinas o proyecciones. Abertura se-
micircular casi tan ancha como larga, con una

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

pequeña plataforma proximal; sin espinas
orales. Ovicela hipertomial coronada por una
avicularia triangular (ausente en la muestra
estudiada). Avicularias interzoeciales triangu-
lares, pequeñas, conectadas por túbulos a au-
tozooides o quenozooides. Quenozooides in-
terzoeciales presentes, irregulares, más pe-
queños que los autozooides, con Opesia peque-
ña y ovalada, conectados por túbulos a otros
zooides. Ancéstrula piriforme y con 4 espinas
orales y sin otras frontales en el zoario estu-

diado.

Material estudiado: Una colonia no ovicelada
que incrusta una pequeña piedra obtenida en
Más a Tierra, archipiélago de Juan Fernández
(muestra ed).

Observaciones: Se han colocado con cierta duda
a los ejemplares estudiados dentro de esta es-
pecie teniendo en cuenta las diferencias ad-
vertidas en la forma de la abertura zoecial
como se aprecia en la Lám. VII, fig. 5. Sin
embargo, los otros caracteres coinciden con la
especie de Audouin con algunas diferencias
inevitables teniendo en cuenta la amplísima
repartción de la especie. Entre éstas se halla el
que sobre la ancéstrula (lám. VII, fig. 6) sólo
existan espinas orales y no frontales como lo
indicado por Hayward y Ryland (1979). Por
otra parte nuestros ejemplares carecen de ovi-
celas lo que impide una confirmación mayor
de ser un taxón conocido o nuevo.

Distribución: Especie cosmopolita según los di-
ferentes autores, faltando sólo en las áreas
polares. En la costa pacífica de América ha
sido señalada para islas Galápagos (Canu y
Bassler, 1930), y en el Pacífico occidental para
Nueva Zelandia, Australia, Filipinas (Powell,
1967; Gordon, 1984). Su presencia en Juan
Fernández la extiende al Pacífico sudoriental.

Género Celleporina Gray, 1848

Diagnosis: Zoario variable, frecuentemente pe-
queño y esferoidal. Zooides levantados y acu-
mulados. Abertura primaria con un seno pro-
ximal. Con un peristoma que lleva avicularias
tubulares en número variable, aunque es co-
mún un par. Pared frontal holocística, pleu-

87

rocística o tremocística. Ovicela hiperestomial
con un área frontal plana provista de fisuras
radiales o de poros pequeños en una corrida
simple. (Traducido y ligeramente modificado
de Pouyet, 1973).

Especie tipo: Lepralia hassalla Johnston, 1847.

Celleporima asymmetrica sp. n.
Lám. VI, figs. 1-6.
Lám. VIII, fig. 4.

Lagenipora rota (MacGillivray): Marcus,
1921:110, figs. 12 a-d.

Diagnosis: Zoario incrustante, convexo, ten-
diente a globular, menor de 1 cm de diámetro,
blanco o traslúcido. Zooides urceolados, acu-
mulados, erguidos, desordenados dispuestos
en varias capas irregulares; pared frontal con
poros marginales; área oral con abertura pri-
maria casi circular con un seno proximal en
forma de V ancha a muy bajo y apenas discer-
nible; abertura secundaria al término de un
peristoma irregular resultante de la elevación
proximal de la abertura; con una avicularia de
origen látero-oral pequeña y ovalada desarro-
llada hacia la línea media en la que frecuen-
temente se sitúa, apareciendo por esto asimé-
trica. Con avicularias interzoeciales, un poco
mayores que las orales, ovaladas y de rostro
suavemente dentado. Ovicela hiperestomial
sobresaliente, con una tábula frontal semilu-
nar provista de hendiduras radiales. Ancés-
trula tatiforme con opesia reducida.

El nombre de la especie alude a la posesión
de una sola avicularia látero-oral, de origen y
posición asimétricos.

Material estudiado: Varias colonias globulares
que incrustan tallos de hidroides, tubos de
poliquetos, etc., provenientes de las islas de
Más a Tierra y Más Afuera en el archipiélago
de Juan Fernández. Holotipo: MZUC 6994:
una colonia de Más a Tierra (muestra ec).
Paratipos: MZUC 6995 (muestras eb, ec y ee).

Discusión: La presente especie es extremada-
mente común en muestras del archipiélago de
Juan Fernández y de las Desventuradas, cre-
ciendo sobre hidrozoos u otros sustratos arbo-

88

rescentes donde forma estructuras globulares
blanquecinas. La apariencia es la de otras es-
pecies de Celleporinidae, diferenciándose por
la asimetría de la avicularia oral, por las “pe-
queñas” avicularias interzoeciales. Según

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Pouyet (1973) cinco son las especies fósiles y
recientes provistas de una sola avicularia pe-
ristomiana y de pared frontal pleurocística.
Las características de éstas y de la nueva espe-
cle aparecen a continuación:

Especies R F —— Av.or. Av. interz. localidad

1. C. aculeata X l elíptica Filipinas

2. C. convexa x l espatulada Olig. Australia
3. C. kalksburgensis y 1-2 triangular Mio. Austria

4. C. rudis Xx 1 espatulada Atlant. sur

5. C. thomasi Xx ] ausente Eoc. Inglaterra
6. C. asymmetrica Xx l-2 ovalada Juan Fernández

R = reciente; F = fósil; Av.or. =

Otras especies con una o dos avicularias son C.
munita, C. agnota, C. platalea y C. porosissuma las
que tienen frontal holocístico a diferencia de
la nueva especie y C. pisiformis frontal tremo-
CÍStICO.

Distribución: Archipiélago de Juan Fernández.
Género Galeopsis Jullien, 1903

Diagnosis: zoarios erguidos, cilíndricos a flabe-
lares, ramificados. Zooides dispuestos vertici-
ladamente, de cinco a n por vuelta u orienta-
dos en una sola dirección frontal, estando ocu-
pado el resto por quenozooides. Contorno
zoectal irregularmente hexagonal, con poros
marginales espaciados; abertura zoecial con un
seno proximal que lleva en cada ángulo próxi-
mo-lateral una avicularia dirigida látero-
distalmente; ocasionalmente con avicularias
espatuladas en las partes bajas del zoario. Ovi-
cela hiperestomial con una tábula central ex-
tensa. Ancéstrula tatiforme con opesia redu-
cida.

Especie tipo: Galeopsis rubidus Jullien, 1903.
Galeopsis megaporus sp. n.
Lám. HH, figs. 1-6.

Haswellia auriculata Busk: Marcus, 1921:1083,
figs. 6 a, e.

avicularia oral; Av. interz. =

avicularia interzoecial.

Spiroporina pentagona (D'Orbigny): Moyano,
1983.
Galeopsis pentagonus (D'Orbigny): Gordon,
1984:116, Lám. 46, A-C.
Diagnosis: Zoario erguido, ramificado irregu-
larmente; ramas cilíndricas a aplastadas con
cinco a n zooides por verticilo, los que aumen-
tan en número donde los tallos o ramas se
dividen. Zooides con dos poros laterales en
cada lado, de superficie lisa; parte distal pro-
longada en las dos avicularias látero-distales
entre las cuales y por debajo de ellas existe una
gran ventana circular presente en todos los
zooides excepto en la ancéstrula. Abertura
primaria casi circular con seno muy amplio y
bajo apenas detectable; abertura secundaria
de contorno complejo por las dos avicularias
latero-orales, con el lado proximal arqueado
hacia arriba. Con avicularias anchamente es-
patuladas en posición variada sobre la superfi-
cie frontal zoecial asociadas con los poros mar-
ginales en los zoarios viejos. Ovicela alargada
cuya tábula frontal ocupa casi todo el frente
ovicelar. Ancéstrula tatiforme de opesia muy
reducida con espinas periféricas.

El nombre científico alude a la gran abertu-
ra distal en la pared frontal.
Material estudiado: Varias colonias obtenidas
en Más a Tierra y Más Afuera, archipiélago de
Juan Fernández. Holotipo: MZUC 6988, una
colonia de Más a Tierra (muestra ec). Parati-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

po: MZUC 6989; dos colonias de la muestra
eb; dos de la muestra ec; dos de la muestra ee y
dos de la muestra ef.

Observaciones: Como se indicó en la sinomimia
esta especie había sido considerada como sinó-
nimo de G. pentagonus sobre la base de conside-
rar que el gran agujero frontal era un carácter
ocasional también presente en ésta, y que se
muestra en la lám. I, 6. La suma de todos los
caracteres demuestra, sin embargo, que se tra-
ta de dos especies distintas que difieren en la
morfología del zoario, en la forma de la aber-

tura primaria, con un seno ancho y apenas.

notorio en la nueva especie y muy marcado y
angosto en G. pentagonus y en la presencia de la
gran abertura frontal. Esta última es constante
en la nueva especie incluso en los dos primeros
zooides yemados por la ancéstrula como se
demuestra en la lám. II, fig. 5. La nueva espe-
cie, además posee tallos dos o tres veces más
gruesos y la presencia de grandes avicularias
espatuladas en zoarios viejos.

Distribución: Archipiélago de Juan Fernández
y probablemente de las Desventuradas o de
San Félix y San Ambrosio.

Galeopsis juanfernandensis sp. N.
Lám. III, figs. 1-6.
Lám. VIII, figs. 5-6.

Haswellia auriculata Busk: Marcus, 1921:103,
figs. 6 a-e.

Spiroporina pentagona (D'Orbigny): Moyano,
1983:22.

Galeopsis pentagonus (D'Orbigny): Gordon,
1984:116, Lám. 46, A-C.

Diagnosis: Zoario erguido, ramificado, grueso,
irregular, de ramas cilíndricas a aplastadas
con cinco a n zooides por verticilo, los que
aumentan en número donde los tallos y ramas
se dividen. Zooides con 2 o más poros margl-
nales; de superficie frontal lisa; parte distal
prolongada lateralmente en las dos avicularias
látero-orales, entre los cuales no hay ninguna
ventana u orificio frontal, tanto en zooides
recién formados como en aquéllos fuertemen-
te calcificados. Abertura primaria casi circular
con un seno muy bajo y ancho apenas discerni-
ble; abertura secundaria con una gran escota-

89

dura en U entre ambas avicularias lateroora-
les. Con avicularias anchamente espatuladas
en posición variada sobre la superficie frontal
en zoarios viejos. Ovicela alargada, con tábula
frontal extensa. Ancéstrula tatiforme de ope-
sia reducida, con espinas periféricas.

El nombre científico alude a la localidad de
origen.

Material estudiado: Varias colonias ramificadas
incluyendo ancéstrulas provenientes de Más a
Tierra, y Más Afuera. Holotipo MZUC 6986,
una colonia de la muestra ec.

Paratipos: MZUC 6987: dos colonias de la
muestra eb; dos de la muestra ec; dos de la
muestra ee y dos de la muestra ef.

Observaciones: Esta especie luce exactamente
igual a la precedente salvo en la carencia de la
gran abertura frontal distal entre y bajo las dos
avicularias. A primera vista debería tratarse
de variedades de una misma especie bajo la
presión de determinados factores ambienta-
les. Sin embargo, ambos tipos de zoarios —y
de especies— aparecen en una misma mues-
tra, y su estructura se mantiene inalterable
desde la misma ancéstrula. Las figuras 5 y 6 de
la lámina III muestran esta condición. Estos
hechos obligan a considerar a estos dos tipos
de zoarios diferentes en las Galeopsis de Juan
Fernández como dos especies distintas. He-
chos parecidos a éste se han descrito para el
caso de Alcyonidium donde dos morfotipos se
han convertido en dos especies diferentes, se-
paradas en ese caso además por características
bioquímicas (Thorpe, Beardmore y Ryland,
1978).

Asimismo, ésta y la especie anterior habían
sido consideradas sinónimas de G. pentagonus
de Magallanes (Marcus, 1921; Gordon, 1984),
lo que, sin embargo, se descartará aquí con la
redescripción de los especímenes de G. penta-
gonus de Magallanes.

Distribución: Archipiélago de Juan Fernández

y de San Félix y San Ambrosio.

Galeopsis reteporelliformis (Moyano, 1983)
Lám. IV, figs. 1-6.

Spiroporina reteporelliformis Moyano, 1983:11,
figs. 24, 27.

90

Diagnosis: ZLoarios vinculariformes, blancos,
irregularmente ramificados. Ramas con dos
caras, la frontal con aberturas zooidales y la
dorsal con quenozooides y avicularias. Zoo1-
des irregularmente hexagonales; pared fron-
tal pleurocística con poros marginales espacia-
dos. Abertura primaria con un seno proximal
en U de profundidad moderada; abertura se-
cundaria con un par de pequeñas avicularias
triangulares látero-distalmente dirigidas y con
una gran escotadura en U entre las avicula-
rias. Ovicela hiperestomial, algo inmersa, con
una tábula frontal extensa. Pared zoarial dor-
sal formada por una o más capas quenozool-
dales superpuestas. Con avicularias ovales en
la cara zoarial dorsal.

Material estudiado: Se revisó el material tipo
consistente en el holotipo (MZUC 9666) y va-
rias decenas de paratipos (MZUC 9667), todos
de la muestra ea.

Observaciones: Esta especie es claramente dis-
tinguible de las otras dos debido a la presencia
de la capa de quenozooldes posteriores. Fron-
talmente las tres son iguales, salvo por la pre-
sencia del poro frontal de G. megaporus sp. n.
pero G. reteporelliformas es más robusta y de
ramas retorcidas. A diferencia de las otras se
desconoce su ancéstrula, la que presumible-
mente sería tatiforme.

La presencia de los quenozooides basales en
varias capas como se observa en la fig. 4 de la
lámina IV hace que esta especie sea mucho
más especializada que todas las otras del géne-
ro, confluyendo merced a este carácter con los
zoarios de Sertellidae. Los quenozooides en G.
reteporelliformis claramente derivan de los zoo1-
des ordinarios como lo revela su contorno he-
xagonal y su tamaño, y al igual que en las
especies de Sertellidae llevan avicularias en su
superficie. Aparentemente la presencia de los
quenozooides reemplazando a los autozooides
de una de las caras del zoario contribuye a
reforzar los tallos permitiéndoles alcanzar un
tamaño mayor. Todos los zoarios conocidos
provienen de la cima de un guyot al oriente de
la isla Más a Tierra, y de ninguna manera han
sido halladas formas semejantes en todas las
otras estaciones examinadas entre los archi-
piélagos de San Félix y San Ambrosio y de

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Juan Fernández. Al momento de describir a
esta especie como nueva (Moyano, 1983) se
tenían dudas pues se pensaba que su morfolo-
gía podría ser el reflejo de alguna característi-
ca ambiental que la indujera. La gran cantidad
de ejemplares nuevos y viejos siempre con
grandes quenozooides dorsales y el aislamien-
to en el que la población aparentemente se
encontraba reafirmaron la idea de su validez.
La presencia de otras dos especies de Spiropori-
na en Juan Fernández con caracteres bien di-
ferentes de la que se comenta vuelve a reafir-
mar su validez.

Distribución: Cima de un Guyot al oriente de la
isla de Más a Tierra entre 220 y 280 m de
profundidad, archipiélago de Juan Fer-
nández.

Galeopsis pentagonus (D'Orbigny, 1847)
Lám. I, figs. 1-6.

Vincularia pentagona D'Orbigny, 1847:21,
Lám. 10, figs. 4-6(1842)

Haswellia auriculata Busk, 1884:173, lám. 24,
figs. 10 a-d. Waters, 1905:238; Non Marcus,
1921:103, figs. 6 a-e.

Spiroporina pentagona (D'Orbigny): Brown,
1952:213, figs. 148-149; Moyano, 1974:15,
MESTIZO LO ZO

Galeopsis pentagonus (D'Orbigny): Gordon,
1984:116, lám. 46, A-C; Gordon, 1985:178,
Rig 29.

Diagnosis: zoarios arborescentes, ramificados
dicotómicamente, de ramas cilíndricas, origl-
nadas de base incrustante. Zooides nítidos en
los extremos de las ramas, de bordes laterales
rectos y proximalmente terminados en punta;
en vista frontal sólo se ve la mitad distal de
ellos quedando la proximal entre los zooides
laterales; con poros areolares marginales irre-
gulares en número, forma y distribución.
Abertura primaria casi circular con un estre-
cho seno proximal cerrada por un opérculo de
su forma y dimensión; abertura secundaria
con una avicularia a cada lado dirigida látero-
distalmente y con una escotadura proximal en
U entre ambas avicularias. Avicularias orales
triangulares cortas que al aumentar la calcifi-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

cación pueden llegar a tocarse dejando un
espiramen frontal proximal irregular. Ovicela
hiperestomial con una gran tábula frontal que
ocupa casi toda su cara frontal.

Material estudiado: Varios zoarios ramificados
obtenidos en Caleta Hale un poco al sur del
Golfo de Penas, sur de Chile. (muestra be).

Observaciones: Como se demostró más arriba
esta especie no es la misma de Juan Fernández
en razón de las diferencias en la estructura
zoarial, abertura zoecial y avicularias espatula-
das frontales. Sus zoarios tienden a ser bastan-
te delicados, lo que también se muestra en los
ejemplares recolectados en la Elevación de las
Kermadec al norte de Nueva Zelandia (Gor-
don, 1984, 1985), contrastando grandemente
con los de $. juanfernandensis sp. n. que son
gruesos (Lám. III, figs. 1 y 2) a menudo aplas-
tados y casi flabelares donde se ensanchan
para ramificarse. La discusión anterior permi-
te descartar los registros supuestos de esta es-
pecie para las islas de Juan Fernández (Mar-
cus, 1921 y Gordon, 1984). El número de zoo1-
des por verticilo en G. pentagonus es alrededor
-de 5, número que asciende hasta 12 o más en
ramas aplastadas de G. juanfernandensis y G.
megaporus sp. n., especies en las que también

9)

puede haber 5 ó 6 por verticilo en zoarios
Jóvenes. La abertura secundaria muestra en
G. pentagonus un seno estrecho y flanqueado
por dos cardelas, el que sólo es comparable en
G. reteporellaformis, mientras que en las otras
dos nuevas especies el seno es amplísimo, muy
bajo y por lo tanto difícil de diferenciar del
contorno apertural. La coalescencia del lado
interno de las cámaras aviculariales orales
dejando una gran abertura (espiramen) subo-
ral se presentan esporádicamente en los zoa-
rios muy calcificados de las partes zoariales
más viejas en G. pentagonus y G. juanfernanden-
515 Sp. N. mientras que en G. megaporus es cons-
tante y ya presente en los dos primeros zooides
yemados por la ancéstrula. La presencia del
puente calcáreo interavicularial también ha
sido señalado para los ejemplares de G. penta-
gonus de Nueva Zelandia y también para G.
polyporus Brown de la misma localidad.

Distribución: especie probablemente circum-
austral en las aguas frías del Atlántico Sur
(D'Orbigny, 1847), Pacífico sudoriental
(Moyano, 1974); Chatham Rise y Kermadec
Rise (Gordon, 1984), fósil y reciente de Tas-
mania y Nueva Zelandia (Brown, 1952; Gor-
don, 1984, 1985).

Clave para las especies chilenas de Galeopsis Jullien.

1. Zooides dispuestos verticiladamente, que se abren en todas las caras del zoario ..... 2
Zooides distribuidos de modo que en el zoario hay dos caras, una dorsal y otra frontal. La
frontal lleva las aberturas zooidales y la dorsal quenozooides cuyas capas aumentan con la
edad. Zoarios muy calcificados y de ramas retorcidas en ejemplares viejos ..........

ad. G. reteporelliformis (Moyano, 1983).

2. Borde proximal de la abertura secundaria en U, sin un gran poro frontal central... 3
Borde proximal de la abertura secundaria arqueado distalmente; con un gran orificio
frontal entre y por debajo de las avicularias columnares lateroorales. Abertura primaria
con seno proximal ancho, bajo y apenas Marcado ....o.......... G. megaporus sp. nN.

3. Zooides dispuestos en verticilos de 5 a 12 elementos; ramas tendientes a aplastarse y de
ramificación irregular. Abertura primaria circular, con seno casi inexistente ........

AA G. juanfernandensts Sp. N.

Zooides dispuestos en verticilos de 5 elementos; ramas circulares de ramificación dicóto-
ma a irregular. Abertura primaria más larga que ancha, con seno en U muy marcado

ATA O: TI G. pentagonus (D'Orbigny).

92

C. DISCUSION Y CONCLUSIONES

Las especies aquí estudiadas no forman un
conjunto coherente, sino que, como lo dice el
título, se ha tratado de dar a conocer nuevos
taxa para el país.

El nuevo género Dendroperistoma se hace ne-
cesario para Cribrilina projecta Waters, en ra-
zón de la peculiaridad de su estructura oral
secundaria no existente entre las especies ac-
tuales de Cribrilina. Igualmente, tampoco se
asemeja a otros géneros de Cribrilinidae de los
mares australes. Este hecho ya había sido des-
tacado por Hastings (1964) quien indica que
no es congenérica con Reginella al que se ase-
meja al menos en la estructura frontal. Lo más
singular, y lo que da el nombre a este nuevo
género, es el peristoma formado por dos tron-
cos multirramificados originados en la parte
posterior del área apertural primaria.

La presencia en aguas del archipiélago de
Juan Fernández de Ch. brongniarti no hace
otra cosa que confirmar la presencia de esta
especie, considerada cosmopolita, en aguas
del Pacífico sudoriental. La presencia de Mi-
cropora mortensen2, Fenestrulina pulchra y de
otras especies no consignadas aquí como Rogic-
ka biserialas, Hippomenella vellicata acentúa la
idea de la relación zoogeográfica entre el área
de Nueva Zelandia y Juan Fernández. (Moya-
no, 1983).

La existencia de Fenestrulina horrida sp. n.
en Magallanes y de Andreella polypora al sur de
Chiloé eleva el número de especies de la pro-
vincia Magallánica a 197 (Moyano, 1982,
1983). Asimismo, con la descripción de una
especie nueva de Andreella, aumentan las espe-
cies del género a 4, todas en torno al cono sur
de América del sur con excepción de A. uncife-
ra que llega hasta Kerguelen. Igualmente la

Nueva concuerda, al presentar varias opesíu-
las a cada lado, con Opaeophora lepida (Moyano
y Melgarejo, 1978).

Hasta este momento se señalaban dos espe-
cies chilenas de Spiroporina: S. pentagona de
Magallanes y Juan Fernández sensu Marcus
(1921) y Gordon (1984) y $. reteporellaformis de
Juan Fernández (Moyano, 1983). Sin embar-
go, el examen detallado de las muestras de
Juan Fernández demuestra que hay allí tres
especies del género: la señalada más arriba y

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

las dos nuevas que aquí se describen. La es-
tructura de estas especies las hacen diferentes
de Spiroporina sensu Harmer, 1957, y más pró-
ximas de Buchneria Harmer, 1957, pero a su vez
Buchnería coincide con Galeopsis Jullien, 1903
(Gordon, 1984). La única especie de Buchne-
ria, B. sinuata Harmer, 1957, concuerda en
general con las especies aquí descritas y en
discusión, por lo que habría que considerar a
nuestras especies como pertenecientes a Buch-
neria. Si se acepta que Buchneria es un sinóni-
mo de Galeopsis, entonces las especies en estu-
dio deben integrar este género. La inclusión
de él en Celleporidae s. 1. (Gordon, 1984) po-
dría aceptarse provisoriamente, pero habría
que tener en cuenta que el modo de yemación
de Celleporidae es generalmente frontal, lo
que da origen al tipo tan particular de colonias
que en esa familia existen, mientras que en
Galeopsis (= Buchneria) es distal, y a partir de
dietelas, formando colonias erguidas.

Los ejemplares de Juan Fernández, descri-
tos como Lagenipora rota MacGillivray por
Marcus, 1921, no pertenecen a ella ni a C.
costazi, en razón de que esas especies siempre
tienen dos avicularias laterorales y que en caso
de L. rota son triangulares mientras que en los
ejemplares en discusión son redondeadas y
normalmente hay una por zooide dirigida
látero-proximalmente. Por esto se les describe
como Celleporina asymmetrica Sp. n.

El presente trabajo permite llegar a las si-
guientes conclusiones:

a) Se describen las siguientes nuevas espe-
cies: Galeopsis juanfernandensis sp. n., Galeopsis
megaporus sp. n., Andreella polypora sp. n., Fe-
nestrulina horrida sp. n. y Celleporina asymmetri-
ca sp. n.

b) Se propone el nuevo género Dendroperis-
toma para acomodar a la especie antártica Cri-
brilina projecta Waters.

c) Se señalan como nuevos taxa para aguas
chilenas a: Chorizopora brongniarti (Audouin),
Maicropora mortensent Livingstone y Fenestrulina
pulchra Gordon.

d) Se redescriben para efectos de compa-
ración y complementación: Andreella uncifera
(Busk), Andreella megapora Moyano y Melga-
rejo, Andreella umbonata (Busk), Galeopsis pen-
tagonus (D'Orbigny) y Galeopsis reteporelliformis
Moyano.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

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AGRADECIMIENTOS

El autor agradece la colaboración de las perso-
nas e Instituciones que se indican y que han
hecho posible este trabajo.

Dirección de Investigación de la Universi-
dad de Concepción, que financia el proyecto
20.38.08 Bryozoa del Pacífico Sudoriental, del
cual esta investigación es parte.

Smithsonian Sorting Center que ha entre-
gado al autor parte de las muestras aquí estu-
diadas y recolectadas por los buques de inves-
tigación Anton Bruun y Eltanin, entre otros.

Dra. Judith Winston, quien permitió mate

rializar el estudio de las muestras enviadas por
el Smithsonian Sorting Center, U.S.A.

Museo Nacional de Historia Natural de
Santiago de Chile que aportó parte de las
muestras de Juan Fernández.

Laboratorio de Microscopía Electrónica de
la Universidad de Concepción por las fotogra-
fías SEM.

Y a todas las personas no citadas expresa-
mente (algunas de las cuales aparecen como
recolectores de algunas de las muestras estu-
diadas) que han ayudado al autor, con recolec-
ciones, opiniones y críticas.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 95

LAMINA 1.
Galeopsis pentagonus (D'Orbigny).

. Zoario juvenil poco calcificado, x 80.
. Extremo distal de la rama derecha de 1. x 34.
. Zooide y avicularias orales. x 101. Note la poca distancia entre las avicularias y la abertura zoecial.
. Abertura primaria. x 371. Note el seno proximal en U, limitado por cardelas.
. Abertura secundaria de un zooide ya muy caicificado. x 169.
. Abertura secundaria de un zooide basal donde se ha producido un puente calcáreo interavicularial que deja un gran
poro frontal semejante al de G. megaporus. x 202.

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LAMINA II.

Galeopsis megaporus Sp. n.

1. Zoario a nivel de una bifurcación. x 34. Note la anchura antes de la bifurcación y que la rama de la derecha va a tener
verticilos de alrededor de 8-9 autozooides.

2. Zooide en vista frontal. x 101. Se destacan el gran orificio interavicularial, las avicularias lateroorales, y los poros
marginales escasos y grandes.

3. Ovicela hiperestomial. x 253. La gran área ectocística no calcificada es claramente visible.

4. Abertura primaria. x 371. El seno proximal es apenas notorio.

5. Colonia joven y ancéstrula. x 84. Observe que los tres primeros autozooides postancestrulares ya presentan el gran
orificio frontal.

6. Ancéstrula en vista frontal. x 202. Son claramente visibles las 7 espinas de esta ancéstrula tatiforme, la gran opesia y lo
que parece ser un “criptocisto” proximal.

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LAMINA III
Galeopsis juanfernandensis Sp. n.
l. Zoario joven. x 17. Previo a la bifurcación los tallos tienen 6 a 7 zooides por verticilo, los que en el ejemplar aquí

representado disminuyen a 5 ó 4.
2. Zoario viejo. x 17. El número de zooides por verticilo es aquí de 6-8 antes y después de la bifurcación.

3. Abertura primaria. x 320. Note que el seno proximal está presente pero mucho menos desarrollado y menos profundo

que el de G. pentagonus de la lámina 1.
4. Area oral de la parte basal de un zoario. x 118. Note la ovicela bastante inmersa, así como las avicularias espatuladas por

arriba y los costados de ella.
5. Colonia juvenil. x 94. Los primeros zooides después de la ancéstrula carecen del gran poro frontal de G. megaporus de la

lámina II, 5. :
6. Ancéstrula en vista frontal. x 143. Al igual que la de G. megaporus sp. n. es tatiforme, con 7 espinas orales, pero con

opesia más estrecha, más ovalada y sin el “criptocisto” proximal.

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LAMINA IV
Galeopsis reteporelliformis (Moyano)

1. Vista frontal del zoario. x 17. La capa calcárea interna de la ovicela es en esta especie muy débil por lo que aparece
frecuentemente rota como se ve aquí.

2. Vista dorsal de una rama joven. x 29. Note que las zoecias laterales están giradas hacia la cara frontal del zoario,
mientras las más centrales se convierten en quenozooides como se aprecia inmediatamente bajo la bifurcación hacia la
derecha.

3. El mismo quenozooide dorsal aludido en el número anterior. x 76. Distinga sus contornos y por dentro de ellos poros
marginales que deben conectar con el celoma subyacente. A través de ellos se yeman probablemente las sucesivas capas de
quenozooides que se aprecian en la figura 4.

4. Corte transversal de la parte inferior de una colonia vieja. x 27. La cara frontal del zoario se ubica hacia abajo y a la
izquierda y unas seis capas de quenozooides aplastados hacia arriba y a la derecha. Este carácter define y separa a esta
especie de todas las otras del género.

5. Abertura primaria. x 295. Su seno bien marcado la aproxima a la de G. pentagonus.

6. Avicularias epizoeciales espatuladas. x 84. Las que aquí se muestran están en la cara frontal del zoario, pero otras
semejantes también pueden hallarse en el lado dorsal en las partes inferiores de zoarios viejos.

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LAMINA V

Fenestrulina horrida sp. n.
1. Zoario en vista frontal. x 14.
2. Zooides fértiles e infértiles. x 59. Note las cuatro espinas orales y las proyecciones irregulares de las paredes frontal y
ovicelar.
3. Area oral de un zooide ovicelado. x 236. Observe que entre el ascoporo y el borde apertural proximal recto no existen
poros. También se observan dos espinas en vez de las cuatro de los autozooides.
4. Detalle de la pared frontal. x 337. Son evidentes las proyecciones, aplastadas, digitadas e irregulares.
5. Zooide en formación del borde zoarial en desarrollo. x 186. Además de los poros marginales se ven las cámaras
dietelares derecha e izquierda; la primera desde el exterior y la segunda desde el interior.
6. Ancéstrula. x 152. Aunque está parcialmente ocluida por depósitos extraños se puede advertir su naturaleza tatiforme;
siendo visibles tres espinas izquierdo-proximales y las bases de otras tres también izquierdas.

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LAMINA VI

Celleporima asymmetrica sp. n.
1. Zooide ovicelado. x 135. La avicularia peristomial es de posición asimétrica y el área tabular de la ovicela posee poros
radialmente dispuestos.
2. Zooide ovicelado con tres avicularias peristomiales. x 135. A ambos lados de la ovicela hay una avicularia semejante a la
asimétrica normal. La condición aquí ilustrada no es la común sino que la excepcional.
3. Abertura primaria. x 219. El lado proximal de la abertura secundaria que se alza como un abanico lleva en uno de sus
costados la avicularia oral de posición asimétrica.
4. Avicularia interzoecial. x 270. De estructura semejante a las orales pero de mayor tamaño.
5. Colonia juvenil que incluye la ancéstrula. x 42. La ancéstrula tatiforme aparece en la parte inferior mediana de la
fotografía notándosele dos bases de espinas.
6. Area oral proximal de un zooide juvenil. Inmediatamente por delante, abajo y los lados se desarrolla una cámara a
partir de los poros marginales. Aquí se ve uno de los poros a la izquierda. Esta cámara crecerá hacia arriba formando una
especie de escudo anteoral que lleva una avicularia en uno de sus costados. Toda la estructura viene a ser como una gran
cámara avicularial. x 219.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 107

LAMINA VII

Micropora mortenseni Livingstone = figs. 1, 2, 3.

Chorizopora brongmarti (Audouin) = figs. 4, 5, 6.
1. Zooides no ovicelados y avicularia interzoecial. x 101. El criptocisto muestra en su parte central perforaciones
irregularmente estrelladas no muy abundantes.
2. Zooides ovicelado y no ovicelado. x 101. Note el ligero dimorfismo apertural.
3. Opesíulas principal y accesoria. x 506. La accesoria inferior semilunar tiene su borde interno denticulado. También se
aprecia el criptocisto granular.
4. Zooides, quenozooides y avicularias interzoeciales. x 67. Los quenozooides presentan aquí una pequeñísima opesia.
5. Area oral y avicularia interzoecial. x 278. La abertura primaria presenta una saliente convexa dirigida distalmente. Se
aprecia también la base de dos espinas orales.
6. Ancéstrula. x 84. Son notorias las bases de cuatro espinas orales.

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LAMINA VIII '
Fenestrulina pulchra Gordon = figs. 1, 2, 3.
Dendroperistoma projecta (Waters) comb. n. = figs. 4, 6.

Galeopsis juanfernandensis sp. mn. = fig. 5.
1. Zooides ovicelados y no ovicelados. x 111.
2. Poros cribados entre abertura zoecial y ascoporo. x 215. Son claras las dos corridas de poros cribados.
3. Poro cribado. x 1.577. Este carácter distingue claramente a esta especie.
4. Autozooide en vista frontal. x 21. Note el peristoma y las dietelas laterales.
5. Ancéstrula vista desde el lado proximal. X 135. Es mucho más alta que ancha a diferencia de la de G. megaporus sp. n.
6. Area oral. x 193. Se observa claramente el peristoma constituido especialmente por los dos troncos látero-proximales
que se dividen repetidamente.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 111

LAMINA IX

1. Andreella polypora sp. n. x 55. Zooides ovicelados. Obsérvese la corrida de opesíulas marginales.

2. Andreella megapora Moyano y Melgarejo. x 55. Note las grandes opesíulas.

3. Andreella uncifera (Busk). x 55. Se distinguen las grandes avicularias unciformes.

4. Andreella umbonata (Busk). x 55. Los zooides son claramente más pequeños que en las otras tres especies.

5. A. polypora sp. n.: avicularia. x 266.

6. A. polypora sp. n.: opesíulas. x 177. Aparentemente todo el conjunto resulta de una división sucesiva de una opesíula
inicial de gran tamaño, como parecen indicarlo las proyecciones calcáreas intraopestulares.

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LAMINA X
Andreella umbonata (Busk) = figs. 1 y 2.
Andreella megapora Moyano y Melgarejo = figs. 3 y 4.
Andreella uncifera (Busk) = figs. 5 y 6.

1. Zooide completo. x 148. Las opesíulas proporcionalmente pequeñas dejan lugar a la gran cámara avicularial supracrip-
tocística, proporcionalmente mayor que en las otras especies.

2. Avicularia. x 409. Esta avicularia, simétrica, triangular, sobresale como un gran umbo en la parte proximal del
criptocisto. Su dirección es siempre proximal.

3. Avicularia. x 223. A diferencia de la especie anterior esta avicularia apunta distalmente y es proporcionalmente mucho
menor.

4. Areas oral y opesiular. x 223. Al igual que en A. polypora sp. n. las opesíulas presentan proyecciones calcáreas internas.
5. Ovicela y área oral. x 131. Note la diferencia entre ésta y las ovicelas de las otras especies. Aquí la capa calcárea externa
es incompleta.

6. Avicularia. x 261. La posición es la normal, es decir, apuntando hacia un costado, aunque aquí está mirada desde el lado
distal al proximal.

114

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 115-119, 1985.

A NEW SPECIES OF SUBANTARCTIC ECHINOID
(ECHINOIDEA: SCHIZASTERIDAE)

Una nueva especie de equinoideo subantártico
(Echinoidea: Schizasteridae)

ALBERTO P. LARRAIN*

RESUMEN

Tnipylus beatriceae Sp. n., una nueva especie de equinoideo
subantártico del Paso de Drake tiene uma forma poco
corriente piriforme, elongada, sistema apical etmolítico '
con tres gonoporos y plastrón mesanfisterno, angosto y
alargado. La relación entre la fasciola peripetal y los péta-
los pares anteriores tiene caracteres intermedios entre
Tripylus y Abatus. Las hembras tienen los cuatro pétalos
pares marsupiales e incuban a los juveniles. La terra typica
sugiere que el Paso de Drake no sería tan efectivo a largo
plazo como barrera de dispersión para los equinoideos de
la infauna bentónica.

INTRODUCTION

The genus Tripylus, originally established by
Philippi (1845) as a subgenus of Spatangus cu-
rrently includes three known Antarctic-
Subantarctic irregular sea-urchins: Tripylus
abatordes (Clark, 1925), Tripylus cordatus (Koe-
hler, 1912) [= T. reductus (Koehler, 1912)] and
Tnripylus excavatus (Philippi, 1845). They are all
characterized by tests ovoid or elongate, sub-
circular or attenuated posteriorly, small to
medium sized, and lack the anterior notch

*Departamento de Zoología Universidad de Concepción.

SUMMARY

A deep water (3550-3800 m) subantarctic echinoid from
the Drake Passage, Tripylus beatriceae sp. n. has an unusual
elongated, pyriform shape, typical three-gonopored eth-
molytic apical system and a narrow, elongated mesam-
phisternous plastron. The relationship between the peri-
petalous fasciole and the anterior paired petals is interme-
diate between the genus Tripylus and Abatus. Females have
all four paired petals marsupial and incubate their young.

- Its terra typica suggests the Drake Passage is ineffective as

long term dispersal barrier for infaunal benthic echi-
noids.

Keywords: new species, Subantarctic, echinoid, taxono-
my, biogeography.

that frequently characterizes heart-urchins.
They exhibit a typical ethmolytic, subcentral
apical system. The paired ambulacra (1, IL, IV
and V) are marsupial in females. There are
narrow peripetalous and a lateroanal fascio-
les, although the posterior part of the peripe-
talous is sometimes reduced. The anterior
part of the peripetalous fasciole runs very clo-
se to the ambitus. Petals II and IV do not reach
the peripetalous fasciole.

Fischer's diagnosis of this genus (1966: 578)
includes females with only the anterior paired
petals marsupial. However, all female speci-
mens 1 have revised bear all four paired petals

116

marsuplial. Even though fascioles tend to be
reduced in adults, both in their outline and
width, the two, peripetalous and lateroanal
are usually found in juvenile specimens. Some
specimens are virtually impossible to differen-
tiate from species of Amphipneustes and Abatus
from just the external appearance and shape
of the test, mainly because of the variability in
the expression of the fascioles (Mortensen,
1936: 232-233).

The material studied was collected by the
University of Southern California (USC) team
during the 1962 Antarctic leg of the R.V. “EL-
TANIN” in the Drake Passage area (Figure 1).
Large part of this collection is now deposited
in the U.S. National Museum (USNM).

The new species is named after my daugh-
ter Beatriz.

SYSTEMATIC DESCRIPTION
Class Echinoidea Leske, 1778
Order Spatangoida Claus, 1876
Family Schizasteridae Lambert, 1905
Genus Tripylus Philippi, 1845

Tripylus beatriceae sp. nov.
(Figures 2a-f)

Holotype: USNM E11008, female, RV “Elta-
nin” Sta. 353, south east of Cape Horn, 55%15'

ed
an)

Figure 1: Terra typica of Tripylus beatriceae sp. n., showing
the Antarctic-Subantarctic distribution of the species of
Tripylus.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

to 55%18'S - 58%55" to 58%58'W, 3514 to 3642
m, USC coll. 12/05/62.

Paratypes: USNM El11018, 9 specs., RV “Elta-
nin” Sta. 353, south east of Cape Horn, 55915"
to 55%18'S - 58955" to 5858'W, 3514 to 3642
m, USC coll. 12/05/62. USNM El4618 RV
“Eltanin” Sta. 126, south east of Cape Horn,
57%12' to57%14'S - 62%45'" to 62%51'W, 3733 to
3806 m, USC coll. 07/26/62.

Diagnosis: Test small to medium sized, elonga-
ted, V shaped posteriorly, without notch at
ambulacrum (A) HI. Peripetalous fasciole na-
rrow, marginal anteriorly. Posterior paired
petals equal to (or slightly longer than) ante-
rior paired. Anus circular in posterior elonga-
tion of the test. Globiferous pedicellariae with
two narrow terminal teeth.

Description of Holotype (Figure 2 a, b): Female,
total length (TL) 33 mm, total width (I'W)
25 mm, height (H) 17 mm. Test clean, white,
highest at interambulacrum (1A) 5 adapically.
Petal (P) I slightly longer than P II.

Description of paratypes (Figure 2 c-f): Nine spe-
cimens, five females and four males, partially
cleaned. Test elongated, cordiform to sub-
triangular, whitish when clean and light
brown in ethanol, small to medium sized. Am-
bitus without notch at A III, semicircular ante-
riorly, V shaped posteriorly. P Il and IV (and
marsupia) do not reach the fasciole. P I and
V equal to or longer than the anterior paired,
P I between 40% and 47% TL, PII between
36% and 48% TL. Peripetalous fasciole na-
rrow, four to five tubercules wide, marginal
anteriorly, without indentations in interambu-
lacral areas, shaped as a U in IA 5 (Figure 2a),
following the shape of the test. No lateroanal
fasciole in adults, but present in incubating
juveniles of a large female (Figure 2e). Three-
gonopored ethmolytic apical system (Figure
3c). Anus circular, in the center of the protru-
ded posterior face of the test. Plastron narrow,
elongated, mesmphisternous (Figure 2d). La-
brum depressed, labium wide. Tridentate and
tripholiate pedicellariae present, globiferous
pedicellariae with two very thin terminal teeth
and a broad triangular base.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 117

2 cm

Figure 2: Tripylus beatriceae sp. n., a-b: Holotype USNM E11008, a = aboral, b = oral; c-d: Paratype USNM
E11008, c = ab oral, d = oral, f = side view; e: Paratype USNM El4618, large female with incubating juveniles.

118

Figure 3: Tripylus beatriceae Sp. N., holotype, schematic, a:
relationship between petal and peripetalous fasciole in P
II; b: same in P IV; c = ethmolytic apical system.

Remarks: This species shows interesting inter-
mediate characters between the genera Trip)-
lus and Abatus. Of these, the anterior petals not
reaching the fascioles is a character estab-
lished by Mortensen as diagnostic for Tripylus.
It is somewhat conflictive in that it is not al-
ways constant (Mortensen, 1951), not even in
the two sides of the same individual (Figure
3a, 3b). It is evident and clear in females, if the
end of the marsupium is taken as the end of
the petal (which is most often the case). Espe-
cially the male specimens studied of 7. beatri-
ceae fail to consistently show this feature and
are close to the condition in Abatus. The na-
rrow peripetalous fasciole, not more than five
tubercules across and marginal anteriorly 1s
definitely that of a Tripylus. The absence of
lateroanal fasciole in adults is a reduction
comparable to that in other genera of the Fa-
mily Schizasteridae (Abatus, Amphipneustes).

The shape of the test, position and shape of
the anus is strikingly coincident with that diag-
nosed by Koehler (1912) for the genus Para-
pneutes (now in the synonymy of Trpylus) in
which he originally described Tripylus cordatus
(= T. reductus).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

DISTRIBUTION (Figure 1):

Tripylus, as Abatus is a schizasterid genus with
representatives in the Antarctic Region and in
the Subantarctic Magellanic Province (biogeo-
graphic units according to Hedgpeth, 1969).
T. abatoides is restricted to Antarctica. Pre-
viously unreported records from the “Elta-
nin” material currently under study extend its
distribution from the Ross Sea area, near Ca-
pe Adare, to the South Shetland Islands,
South Orkney Islands, coast of the Weddell
Sea, and Bransfield Strait, at depths between
73 and 1116 m. 7. cordatus is sympatric with 7.
abatoides in the Antarctic area, between 75 and
600 m. One record of this species (as T. reduc-
tus) based on one male specimen and juveniles
from Islas de los Estados and Observatorio
(Bernasconi, 1953) is most likely an Abatus. T.
excavatus 1s strictly Subantarctic, distributed in
the Straits of Magellan, off Tierra del Fuego,
Malvinas (Falkland) Islands to near 49%S on
the Atlantic coast. It is a shallow water species,
recorded between the intertidal and 128 m.
The new species, T. beatriceae is known yet
only from two deep water localities (3500-
3800 m) in the Drake Passage, off Cape Horn.
This fauna is poorly known, except for the
aberrant deep water Pourtalesiids collected
for the first time by the H.M.S. “Challenger” in
the nineteenth century (Agassiz, 1881). This
distribution suggests the Drake Passage may
not be an impassable barrier to dispersal of
eurybathic, incubating, infaunal Schizasterid
echinoids between southern South America
and Antarctica.

ACKNOWLEDGEMENTS

Access to the Collection and Library at the
U.S. National Museum, Smithsonian Institu-
tion, help and comments from Dr. David L.
Pawson and the curatorial staff are ackno-
wledged. Interest on these specimens was kin-
dly released by Dr. Richard Chesher, who first
studied them. Travel funds from a Sigma Xi
Grant-in-Aid are also acknowledged.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

119

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 121-129, 1985.

DISTRIBUCION, FRECUENCIA Y ASPECTOS BIOLOGICOS
DE UDONELLA CALIGORUM JOHNSTON
(MONOGENEA: UDONELLIDAE) EN LEPEOPHTHEIRUS
MUGILOIDIS VILLALBA Y DURAN
(COPEPODA: CALIGIDAE)

Distribution, frequency and biological aspects
of Udonella Caligorum Johnston
(Monogenea: Udonellidae) on Lepeophthetrus
Mugulordas Villalba £ Durán
(Copepoda: Caligidae)

CESAR VILLALBA S.*

RESUMEN

Se examinaron 4.241 ejemplares de Lepeophtherrus mugilor-
dis Villalba y Durán, (866 machos, 2.508 hembras y 867
inmaduros) (Copepoda: Caligidae), parásito de Mugalordes
chilensis (Molina, 1782) recolectados en la zona centro-
norte y central de Chile, constatándose la presencia de
Udonella caligorum Johnston, 1835, en un 3,0% de los
copépodos machos y en un 17,0% de las hembras. No se
encontró en los copépodos inmaduros.

Las formas maduras e inmaduras de U. calagorum se
ubican principalmente en los márgenes laterales del capa-
razón, y sus huevos de preferencia en abdomen y láminas
caudales de los copépodos machos. En los copépodos
hembras, los huevos y formas inmaduras se encuentran

principalmente en las cuartas patas y las formas maduras

en los sacos ovíferos.

Se concluye que U. caliagorum posee áreas definidas
sobre el copépodo portador para desovar, crecer y trasla-
darse de un copépodo a otro, alimentándose directamen-
te de la superficie del pez. Se propone una relación de tipo
forético (epibiosis obligada) entre U. caligorum y L. mugi-
lozdis.

El hallazgo de U. calagorum constituye el primer regis-
tro de esta especie para Chile.

*Departamento de Zoología, Fac. Cs. Biol. y Rec. Nat.,
Casilla 2407, Apartado 10, Universidad de Concepción.
Concepción - CHILE.

ABSTRACT

4241 specimens of Lepeophtheirus mugiloidis Villalba ge
Duran, (866 males, 2508 females and 867 inmatures)
(Copepoda: Caligidae), parasitizing Mugiloides chilensis
(Molina, 1782) collected in North-Central and Central
areas Of Chile were examined. Udonella caligorum
Johnston, 1835, was present in 3,0% of the male
copepods, in 17,0% of the female copepods and
altogether absent in the inmature copepods.

The mature and inmature forms of U. caligorum were
found on the lateral sides of caparace while their eggs
were laid preferently on the abdomen and caudal rami of
the male copepods. In the females the eggs clusters and
inmature forms were principally in the fourth legs and the
mature forms on the egg strings.

Itis concludes that U. caligorum has some definite areas
upon their host to spawn, grow and move from one
copepod to another, feeding directly from the fish
surface. A phoretic relation (obligatory epibiosis) between
U. caliagorum and L. mugalordis is proposed.

U. calagorum is for the first time reported to Chile

Keywords: Udonella caligorum. Ecology. Lepeophtheirus
mugllo:dis. Parasite. First record. Chile.

1:22

INTRODUCCION

En nuestro país los trabajos realizados en mo-
nogeneos parásitos de peces son realmente
escasos, pudiendo mencionarse solamente la
presencia de 9 especies: Microbothrium tolloi
Brinkman, 1952; Entobdella squamula (Heath,
1902); E. brattstrom: Brinkman, 1952; Neobene-
denta melleni (Mac Callum, 1927); Benedenia
sp.; Interniloculus chilensis Suriano y Beverley-
Burton, 1979; Callorhynchicola branchialis
Brinkman, 1952; Anthocotyle merlucci (Van Be-
neden € Hesse, 1863) y Capsala martimiere:
Bosc, 1811 (Brinkman, Jr., 1952; Baeza y Cas-
tro, 1975; Jaramillo, 1977 y Suriano y Bever-
ley-Burton, 1979; Fernández, 1985; Villalba y
Fernández, 1985).

Dentro de los monogeneos, Udonella caligo-
rum Johnston, 1835, es una forma pequeña

que vive adherida a la superficie externa de

copépodos parásitos, generalmente caligoí-
deos, aunque ha sido encontrada en otros gru-
pos (Dawes, 1946; Delamare-Debouteville,
1950; Causey, 1961; Schell, 1972; Kabata,
(SS):

U. caligorum no posee estados planctónicos,
y del huevo, adherido a los copépodos porta-
dores, emerge una larva idéntica al adulto,
excepto en tamaño y madurez sexual (Schell,
1972; Kabata, 1973). El problema que se plan-
tea al no poseer estados libres, es cómo se
realiza la transmisión de un copépodo a otro y
de un pez a otro. Van Beneden (1858; fade
Causey, 1961) sugiere que la transmisión se
llevaría a cabo a través de los estados libres de
los copépodos hospedadores. Kabata (1973)
postula como modo de transmisión de uno a
otro copépodo el contacto directo entre ellos
(debido a la alta densidad de Caligus elongatus
Nordmann, 1832 —hasta 200— en la cavidad
bucal de Gadus morhua en el Atlántico Norte) y
a través de los copépodos adultos de uno a
Otro pez.

Con respecto al modo de alimentación, éste
es bastante incierto. Sproston (1946) e Ivanov
(1952; fide Kabata, 1973) sugieren que el ver-
me comería de los tejidos arrancados por el
copépodo al alimentarse de la superficie del
pez hospedador; esto habría sido confirmado
según el primero de los autores, al encontrar

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

que U. caligorum pasa la mayor parte del tiem-
po en la superficie ventral de los copépodos,
tomando de esta manera el alimento despren-
dido. Causey (1961) encuentra que el verme se
ubica de preferencia en los sacos ovíferos de
las hembras, lo cual estaría en contraposición
con las afirmaciones anteriores. Posterior-
mente, otros autores sugieren que el verme
arrancaría su alimento directamente de los
tejidos del pez, con lo cual estaría aumentando
el daño causado por los copépodos parásitos
(Kabata, 1973).

El presente trabajo permite establecer las
relaciones existentes entre U. caligorum y L.
mugilovdis recolectados en la zona centro-norte
y central de Chile, contribuyendo al conoci-
miento de su biología, distribución, frecuencia
y transmisión.

MATERIALES Y METODOS

Durante el año 1982, se recolectaron 4.241
ejemplares de £L. mugiloidis (Copepoda: Caligi-
dae) de la superficie corporal, branquias y ca-
vidad bucal de Mugilordes chilensis (Molina,
1782), de Chile (Caleta Cascabeles (31%55'S;
71%31'0), Algarrobo (33%22'S; 71940'0) y Ca-
leta Reque (36%45'S; 73%11'0)).

Los copépodos parásitos fueron examina-
dos mediante estereomicroscopio para detec-
tar la presencia de ejemplares de Udonella cali-
gorum, utilizando posteriormente el método
dado por Kabata (1973) modificado, debido a
que en los copépodos examinados U. calygorum
no se encuentra en la superficie ventral. Este
método divide a los copépodos machos en 7
sectores y a las hembras en 8, como se indica a
continuación:

Area 1 = Zona cefálica del escudo dorsal del
cefalotórax.

Area 2 = Zonas laterales izquierda y derecha
del cefalotórax.

Area 3 = Zona torácica.

Area 4 = Terceras patas y proyección de la
lámina desde el escudo dorsal.

Area 5 = Segmento libre y cuartas patas.

Area 6 = Complejo genital.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Area 7 = Abdomen, láminas y setas caudales.

Area 8 = Sacos ovíferos de los copépodos
hembras.

Las respectivas áreas se indican en las figuras 1
iZ

En total se examinaron 4.241 copépodos:
866 machos, 2.508 hembras y 867 inmaduros
(estados de cálimus y preadultos), encontrán-
dose en ellos 1.045 ejemplares de U. caligorum
y 362 agrupaciones de sus huevos.

Los copépodos con sus vermes fueron fija-
dos en alcohol 70% y algunos de estos últimos
teñidos con Hematoxilina de Harris o Carmín
Acético de Semichón y montados en gelatina-
glicerina o Entellan para observar su estructu-
ra interna.

Para determinar la madurez de los ejempla-
res de U. caligorum se utilizó la condición de
sus gónadas (Kabata, 1973). Las medidas de
los estados de nauplio de los copépodos y de
las larvas de U. caligorum recién eclosionados,
se realizaron con un microscopio Carl Zeiss
con ocular graduado. Además se utilizó el Mi-
croscopio Electrónico de Barrido (SEM), Auto
Scan ETEC, de la Universidad de Concep-
ción, para observar ultraestructura y posibles
daños provocados por los vermes sobre los
sacos ovíferos de los copépodos.

El material estudiado se encuentra deposi-
tado en el Museo Zoológico de la Universidad
de Concepción con los siguientes números: U.
caligorum MZUC 6377 a MZUC 6386; L. mugn-
loidis MLUC 3221, MZUC 3222, MZUC 3240 a
MZUC 3243, y en la colección particular del
autor.

RESULTADOS

La población de Lepeophtherrus mugilordis exa-
minada presentaba un porcentaje de infec-
ción de un 17,0% para los copépodos hembras
y un 3,0% para los machos. En los copépodos
inmaduros no se observaron ejemplares de U.
caligorum o sus huevos. La intensidad de infec-
ción con respecto a los vermes fue de 1,7% y
2,4% para copépodos machos y hembras, res-
pectivamente. Con respecto a la intensidad de
infección para las agrupaciones de huevos,

123

ésta fue de 1,0 para los copépodos machos y de
1,5 para las hembras (Tabla 1).

Tabla I

Total de copépodos examinados,
porcentajes de infección e intensidad
con respecto a U. caligorum y
sus agrupaciones de huevos.

(La cifra entre paréntesis indica
el número de copépodos infectados)

Número de % de Intensidad
copépodos infección U. caligorum Huevos
Machos 866 3,0% (26) 107 1,0
Hembras 2508 17,0% (427) 24 1,5
Inmaduros 867 0% (0) 0 0
Total 4241 94 (458) 23 1,4

La Tabla 11 muestra que en los copépodos
machos el 70,0% de los ejemplares de U. cal-
gorum está concentrado en el área 2, o sea, en
los márgenes laterales del caparazón. Un
12,5% se ubica en el área 6 (segmento genital)
y un 10,0% en el área 1 (zona cefálica dorsal
del caparazón). En las áreas 3, 4 y 7 se encon-
tró sólo un 2,5% en cada una de ellas. En el
área 5 (segmento libre y cuartas patas) no se
encontraron vermes.

Con respecto a los copépodos hembras, el
35,5% de los vermes se concentra en el área 5
(segmento libre y cuartas patas) y un 34,0% en
los sacos ovíferos (área 8). En el área 6 (seg-
mento genital) y en el área 2 (márgenes latera-
les del cefalotórax) se encontró un 18,5% y un
7,4%, respectivamente. En el resto de las áreas
(1, 3, 4 y 7) la intensidad varía entre 0,2% y
2,8%.

Las formas inmaduras de U. caligorum (Ta-
bla 111) se concentran preferentemente en los
márgenes laterales del cefalotórax (área 2) y
segmento genital (área 6) de los copépodos
machos, con un 50,0% y 31,3%, respectiva-
mente. En los copépodos hembras, en el área 5
se encontró un 48,0% de formas inmaduras.
El área 6 presenta un 25,7% y el área 8 un
17,1%. En el resto de las áreas los porcentajes
son relativamente bajos.

194 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Tabla II
Distribución de U. caligorum (maduras e inmaduras) en L. mugilordas
(el número entre paréntesis indica cantidad de vermes presentes en cada área)

Cop. machos 23*

Cop. hembras 427*

Cop. inmaduros

*: Cantidad de L. mugilordis con U. caligorum.

Tabla 1
Distribución de U. caligorum (inmaduras) en L. mugilordis
(el número entre paréntesis indica cantidad de vermes presentes en cada área)

Cop. machos 4*

Cop. hembras 151*

Cop. inmaduros

*: Cantidad de L. mugilordis con U. caligorum.

Tabla IV.
Distribución de U. caligorum (maduras) en L. mugiloidas
(el número entre paréntesis indica cantidad de vermes presentes en cada área)

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

125

Tabla V
Distribución de las agrupaciones de huevos de U. caligorum en L. mugiloidis
(el número entre paréntesis indica agrupaciones de huevos presentes en cada área)

Cop. machos 3*

Cop. hembras 247*

Cop. inmaduras

*: Cantidad de L. mugiloidis con U. caligorum.

Las formas maduras de U. calagorum (Tabla
IV) se ubican de preferencia en la región ante-
rior de los copépodos machos, con un 83,3%
en el área 2 y un 12,5% en el área 1, lo cual nos
da cerca de un 96,0% entre ambas áreas. En
los copépodos hembras, cerca de las tres cuar-
tas partes de los vermes maduros se concen-
tran en los sacos ovíferos (área 8). En el resto
de las áreas (2, 3, 4, 5 y 6) el porcentaje es bajo.
No se encontraron formas maduras en las
áreas 1 y 7 de los copépodos hembras y 3, 5, 6 y
7 de los machos.

Con respecto a las agrupaciones de huevos
(Tabla V), se encontró un 66,6% en el área 7
de los copépodos machos y un 76,9% en el
segmento libre y cuartas patas de los copépo-
dos hembras. El área 6 de las hembras presen-
ta un porcentaje de 17,3%, bajando éste en el
resto de las áreas.

La cantidad de huevos en cada agrupación
fue muy variable, de 1 a 50 huevos por agru-
pación, con una media de 7,7 para los copépo-
dos hembras y de 1 a 6, huevos con media de
3,3 para los copépodos machos. El tamaño de
los huevos (sin el filamento polar) es en pro-
medio de 245um de largo por 110um en su
ancho máximo (Fig. 7). El tamaño de los ejem-
plares recién eclosionados de U. caligorum es
en promedio de 379um de largo por 117um
de ancho máximo.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Las características morfológicas de los ejem-
plares aquí estudiados concuerdan con lo se-
ñalado por Sproston (1946), Yamaguti (1963)
y Schell (1972) para U. caligorum, lo que per-
mite detectar por primera vez su presencia en

Chile.

La distribución de U. caligorum sobre la su-
perficie del copépodo hospedador no está de
acuerdo con el área disponible. Todos los
ejemplares del verme, tanto maduros como
inmaduros, fueron encontrados en la superfi-
cie dorsal o dorsolateral de los copépodos por-
tadores, a diferencia de lo señalado por otros
autores que la han encontrado en la superficie
ventral. Sproston (1946) encuentra a Ú. caligo-
rum, en su mayor parte, en la superficie ven-
tral de los copépodos. Kabata (1973) encontró
que un 6,2% de los vermes se ubicaban en el
lado ventral de Caligus elongatus en el Atlántico
Norte. La diferencia entre una u otra observa-
ción se debe posiblemente al copépodo porta-
dor, ya que C. elongatus se encuentra general-
mente fijo a la superficie del pez (cavidad bu-
cal) sin efectuar grandes desplazamientos, no
así L. mugilowdis, que se desplaza constante-
mente en la superficie externa del pez hospe-
dador, con lo cual impide que los vermes se
fijen en su lado ventral.

Sproston (1946) sugiere que UÚ. caliagorum se

126 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Figs. 1.- Areas en Lepeophtheirus mugiloidis macho (esquemático); Fig. 2.- Areas en Lepeophtheirus mugiloidis hembra
(esquemático); Figs. 3-6.- Transmisión de Udonella caligorum en Lepeophtheirus mugiloidis a través de la cópula. Los puntos
indican áreas máximas de distribución en hembras y machos de L. mugiloidis y las flechas la dirección de la transmisión.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

127

Fig. 7.- Agrupaciones de huevos de Udonella caligorum sobre las cuartas patas de L. mugilowdis (110x); Fig. 8.- Ejemplares
de U. caligorum sobre los sacos ovíferos de L. mugiloidis (44x).

alimentaría de los restos de tejidos liberados
por los copépodos al alimentarse de los peces.
Esto es poco probable debido a que los copé-
podos no despegan el cono bucal de la superfi-
cie de sus hospedadores al alimentarse, y sólo
podrían escapar pequeños trozos de tejido al
separar el cono bucal para trasladarse, los cua-
les no serían suficientes para soportar una
cantidad ni siquiera pequeña de vermes (Ka-
bata, 1973). Asimismo, según las observacio-
nes aquí efectuadas, sería imposible para los
vermes alcanzar el cono bucal desde la parte
superior de los copépodos, con lo cual igual-
mente es imposible que se alimenten de los
tejidos desprendidos de los peces por la activi-
dad de éstos. Se debe presumir, entonces, que
U, caligorum se alimentaría directamente de la
superficie del pez, ya que no se observó nin-
gún tipo de daño sobre los copépodos o sus
sacos ovíferos, a pesar de haberse utilizado
microscopía electrónica de barrido (Fig. 8).
Según lo observado, los vermes inmaduros
se ubican de preferencia en el área 5 en los
copépodos hembras, lo que está en concor-
dancia con la ubicación de las agrupaciones de
huevos. Es lógico pensar que en el momento
de la eclosión, los vermes inmaduros perma-
nezcan cerca de los huevos de los cuales eclo-
sionaron y realicen migraciones hacia uno u

otro lado en la supercicie del copépodo. Kaba-
ta (1973) encontró que el mayor número de
vermes inmaduros en los copépodos hembras
se ubicaba en el área 2 y las agrupaciones de
huevos en el área 6. El postula que los vermes
al eclosionar migrarían desde el área 6 al área
2 para alimentarse. En £. mugilordis la migra-
ción de los vermes, luego de eclosionar, ocu-
rriría hacia la parte posterior del copépodo
(área 6 con un 25,7% y área 8 con un 17,1%),
alimentándose y madurando en estas últimas
zonas. El mayor número de formas maduras
fue encontrado en el área 8 (74,3%).

Es posible reconocer como zonas de desove
de U. caligorum en L. mugiloidis las áreas 5 y 7
en hembras y machos, respectivamente, lo
cual concuerda en parte con lo observado por
Kabata (1973) para Caligus elongatus (área 6 en
copépodos hembras y machos). En esta ubica-
ción solamente se producen en ambos casos,
corrientes de agua, ya sea al desplazarse el
copépodo y el pez en el caso de £. mugalordas, O
al desplazarse el pez solamente en el caso de C.
elongatus. Esta condición creada por las co-
rrientes de agua probablemente sea óptima
para la conservación, desarrollo y eclosión de
los huevos.

En los copépodos machos, el mayor porcen-
taje de ejemplares de U. calygorum se encuen-

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 131-139, 1985.

BIOLOGIA Y ESTADOS INMADUROS DE DOS MARIPOSAS
SATURNIDAS CHILENAS (LEPIDOPTERA: SATURNIIDAE):
CARACTERES DIAGNOSTICOS DIFERENCIALES ESPECIFICOS

Biology and immature stages of two Chilean saturnid butterflies
(Lepidoptera: Saturniidae):
specific and differential diagnostic features

LUIS E. PARRA, ANDRES O. ANGULO Y CARMEN JANA-SAENZ*

RESUMEN

Se describen: huevo, larva y pupa de Ormiscodes cinnamo-
mea (Feisthamel) y el complejo hipofaríngeo de Catocepha-
la marginata (Philippi) (Lepidoptera: Saturniidae); se en-
tregan los caracteres diferenciales entre estas dos especies,
se caracteriza la biología y los ciclos de desarrollo de cada

una de las especies. Se esquematizan los caracteres consi-

derados.

INTRODUCCION

Las mariposas nocturnas Ormiscodes cinnamo-
mea (Feisthamel) y Catocephala marginata (Phi-
lippi) (Lepidoptera: Saturniidae), se confun-
den fácilmente en su apariencia externa, ellas
constituyen plagas forestales en plantaciones
artificiales de importancia económica (pino,
sauce, y álamo, respectivamente), en sus esta-
dos preimaginales las larvas son fitófagas, por
lo cual se hace necesario el estudio de sus
estados inmaduros, tanto desde el punto de
vista sistemático como biológico.

*Departamento de Zoología. Facultad de Ciencias Bioló-
gicas y de Recursos Naturales. Casilla 2407. Universidad
de Concepción. Concepción-CHILE.

ABSTRACT

The egg, larvae and pupae of Ormiscodes cinnamomea
(Feisthamel) and the hipopharingeal complex of
Catocephala marginata (Philippi) (Lepidoptera: Satur-
niidae) are described; differential features and the life
history and biology of each one of two species are given.
The features are illustred.

Keywords: Lepidoptera. Saturniidae. Immature stages.
Biology. Systematics. Chile.

Abreviaturas usadas

aa abertura anal

abd, 1,23 segmentos abdominales 1, 2, 3
abg abertura genital

aclp anteclypeus

afr esclerite adfrontal

ant antena

aovp abertura del ovopositor
cee cerda estipular

cer ceratoteca

clp clypeus

clp-lbr clypeus labrum

cplb cerda del palpo labial
cre cremaster

epr espiráculo

128

tra en el área 2 (70,0%). Las formas inmaduras
se encontraban presentes en un 50,0% en di-
cha área y las maduras en un 83,3%. Esta
ubicación, bastante diferente a la encontrada
en los copépodos hembras, se debe posible-
mente al mecanismo de transmisión de U. cali-
gorum de uno a otro copépodo en el momento
de la cópula (Figs. 3 - 6).

Ivanov (1952; fide Kabata, 1973) sugiere la
posibilidad de que los vermes recién eclosio-
nados se unirían a las larvas libres de los copé-
podos en el momento de su eclosión, trasla-
dándose de esta manera de uno a otro copépo-
do y de pez a pez. Esto no puede ser aceptado
debido a que el tamaño del estado de nauplio
de L. mugiloidis mide 475um X 167um y la
larva de U. caligorum, al momento de salir del
huevo, 379um X 117um, lo que hace imposi-
ble su traslado. A esto se debe agregar el hecho
de que los copépodos caligoídeos en estado
libre sufren 2 mudas (Wilson, 1905), lo cual
dificultaría enormemente la permanencia del
verme sobre ellos. El no haber encontrado
ningún verme en los estados de cálimus y
preadultos de L. mugaloidis, confirma el hecho
de que la transmisión no puede llevarse a cabo
a través de los estados de nauplio de los copé-
podos hospedadores. Es mucho más probable
una transmisión a través de los ejemplares
adultos de L. mugilordis, debido al alto porcen-
taje de infección que presentan las poblacio-
nes de Mugiloides chilensis y a su alto grado de
intensidad (96,0% de infección, intensidad de
23,8 y rango de 1 a 167 para la zona cen-
tro-norte y 89,0% de infección, intensidad de
14,0 y rango de 1 a 78 para la zona central)
(Villalba, 1982). Tal posibilidad de transmi-
sión es sugerida por otros autores (Wilson,
1905; Kabata y Hewit, 1971; Kabata, 1973).

Con respecto al tamaño de los huevos y
larvas recién eclosionados, existen diferencias
notorias con lo observado por Schell (1972),

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

quien para los huevos, da tamaños promedios
de 342um X 167um y de 372um X 68um para
las larvas recién eclosionadas, variando el nú-
mero de huevos por agrupación de 10 a 30,
con un máximo de hasta 200; en el caso de U.
caligorum de L. mugiloidas, el tamaño promedio
de los huevos fue de 245um X 110um, el de las
larvas recién eclosionadas de 379um X 117um
y el número de huevos por agrupación fue de
l a 50, con una media de 7,7. Se debe conside-
rar que las experiencias de Schell (1972) fue-
ron realizadas bajo condiciones de laboratorio
y no en la forma natural, lo que podría expli-
car las diferencias encontradas.

Los resultados, más la discusión preceden-
te, permiten concluir que:

1. La evidencia acumulada sugiere que U. cali-
gorum sería más bien un ictioparásito que
un hiperparásito.

2. La relación entre U . caligorum y L. mugilordis
parece ser más bien de tipo forético (epibio-
sis obligada).

3. U. caligorum muestra áreas de ubicación de-
finida sobre los copépodos, de acuerdo a
sus necesidades biológicas: desove, crianza,
alimentación y traslado de uno a otro copé-
podo a través de la cópula.

4. El traslado de pez a pez se realizaría por
medio de los copépodos adultos y no a tra-
vés de sus primeros estados, lo que se con-
firma por el hecho de no haber encontrado
ejemplares de U. caligorum en los copépo-
dos inmaduros.

AGRADECIMIENTOS

Se agradece a los señores Hugo Pacheco y
Raúl Alarcón, del Laboratorio de Microscopía
Electrónica de la Universidad de Concepción,
por su asistencia técnica y a los correctores
anónimos de este trabajo por sus valiosas suge-
rencias.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

1129

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BIOLOGIA Y ESTADOS INMADUROS DE DOS MARIPOSAS
SATURNIDAS CHILENAS (LEPIDOPTERA: SATURNIIDAE):
CARACTERES DIAGNOSTICOS DIFERENCIALES ESPECIFICOS

Biology and immature stages of two Chilean saturnid butterflies
(Lepidoptera: Saturniidae):
specific and differential diagnostic features

LUIS E. PARRA, ANDRES O. ANGULO Y CARMEN JANA-SAENZ*

RESUMEN

Se describen: huevo, larva y pupa de Ormiscodes cinnamo-
mea (Feisthamel) y el complejo hipofaríngeo de Catocepha-
la marginata (Philippi) (Lepidoptera: Saturniidae); se en-
tregan los caracteres diferenciales entre estas dos especies,
se caracteriza la biología y los ciclos de desarrollo de cada

una de las especies. Se esquematizan los caracteres consi-

derados.

INTRODUCCION

Las mariposas nocturnas Ormiscodes connamo-
mea (Feisthamel) y Catocephala marginata (Phi-
lippi) (Lepidoptera: Saturniidae), se confun-
den fácilmente en su apariencia externa, ellas
constituyen plagas forestales en plantaciones
artificiales de importancia económica (pino,
sauce, y álamo, respectivamente), en sus esta-
dos preimaginales las larvas son fitófagas, por
lo cual se hace necesario el estudio de sus
estados inmaduros, tanto desde el punto de
vista sistemático como biológico.

*Departamento de Zoología. Facultad de Ciencias Bioló-
gicas y de Recursos Naturales. Casilla 2407. Universidad
de Concepción. Concepción-CHILE.

ABSTRACT
The egg, larvae and pupae of Ormiscodes cinnamomea
(Feisthamel) and the hipopharingeal complex of
Catocephala marginata (Philippi) (Lepidoptera: Satur-
niidae) are described; differential features and the life
history and biology of each one of two species are given.
The features are illustred.

Keywords: Lepidoptera. Saturniidae. Immature stages.
Biology. Systematics. Chile.

Abreviaturas usadas

aa abertura anal

abd, 1,23 segmentos abdominales 1, 2, 3
abg abertura genital

aclp anteclypeus

afr esclerite adfrontal

ant antena

aovp abertura del ovopositor
cee cerda estipular

cer ceratoteca

clp clypeus

clp-lbr clypeus labrum

cplb cerda del palpo labial
cre cremaster

epr espiráculo

es espuripedio

espp espiritrompa

espt espinerete

fr frente

ge gena

htm hendidura transversal media de

la hipofaringe

lbr labrum

md mandíbula

n notum

O Ojo

oc ocelo

pabm punto de articulación del brazo
maxilar

pb placa basal

plb palpo labial

ptt pteroteca

red región distal de la hipofaringe

saf sutura adfrontal

se sutura epistomal

sep sutura epicraneal

sf sutura frontal

splb segmento del palpo labial

sperpr scolus supraespiracular

ssbepr scolus subespiracular

ssbb scolus subdorsal

Ssv scolus subventral

stn esternite

thr 1, 2,3 segmentos torácicos 1, 2, 3

tg tergite

Ormiscodes cinnamomea (Feisthamel)

(Figs. 1-7 y 9-18)

Bombyx cinnamomea Feisthamel, 1839, pl. 22,
fig. 2

Ormiscodes cinnamomea (Feisthamel) Blan-
chard, 1852. In Gay, vol. 7, págs. 61-62.

Huevo (Figs. 12 y 13): Mide 1,75 mm de alto y
1,15 mm en su ancho máximo, de forma ova-
lada, color castaño oscuro con los polos vege-
tativo y animal de color blanco amarillento; en
el centro del polo animal destaca una micropi-
la café clara. En condiciones de laboratorio los
huevos son ovipuestos en una sola capa, uno al
lado del otro (Fig. 12); en condiciones natura-
les son ovipuestos en ramillas o grupos de
acículas formando anillos alrededor de éstas;

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

el número de huevos ovipositados alcanza a
300 (Villa y Ojeda, 1981).

Larva (Figs. 1-7, 14): Largo total 100 mm,
ancho máximo 10,5 mm. Cuerpo de 13 seg-
mentos; segmentos torácicos con patas; 4 pa-
res de patas abdominales desde el sexto al
noveno segmento y un par de patas anales en
el último segmento; cabeza hipognata (Fig. 1),
castaño oscuro de 5,35 mm de ancho y 5,10
mm de alto, sutura frontal (sf) alcanza las dos
terceras partes del alto de la cabeza; clypeus
(clp) subrectangular, labrum (Ibr) con una in-
vaginación que abarca sólo la cuarta parte de
éste. Antenas (Fig. 3) formadas por dos seg-
mentos que nacen del scapo; el segmento pro-
ximal a ésta subigual a la mitad del segmento
distal; mandíbula (Fig. 4) provista de dos cer-
das gruesas, en su parte basal con una evagina-
ción pronunciada; el complejo hipofaríngeo
(Fig. 6) con los palpos labiales (plb) de 2 seg-
mentos, donde splb;, es 4 veces mayor que
splb>, cerda estipular (cee) gruesa, 5 veces más
larga que cplb, y más corta que cplb> (la mitad
de ésta), hendidura transversal media que se-
para la región distal y proximal levemente
insinuada; el espinerete (espt) es de ápice
trunco y dorsalmente escotado (Fig. 14), los
lados son subconvergentes, la placa basal (pb)
alcanza las dos terceras partes de éste.
Primer segmento torácico (Fig. 7), con 8
scoli; 2 subdorsales (ssbd), 2 supraespiracula-
res (sperpr), 2 subespiraculares (ssbepr) y 2
subventrales (ssv), todos dirigidos hacia ade-
lante por sobre la cabeza, el resto del segmento
presenta cerdas de color claro; en sus bordes
laterales se encuentra el espiráculo el cual es
ovalado con bordes externos negros y castaño
amarillento en su interior. Pata protorácica
compuesta por tres segmentos diferentes, cu-
bierta de cerdas claras, los dos segmentos pro-
ximales subiguales en longitud, el segmento
distal más largo que éstos y termina, en su
extremo apical, en una uña curvada aguda en
su extremo. Segundo segmento torácico con 8
scoli, los scoli subdorsales y supraespiracula-
res el triple de la longitud de los scoli subespi-
raculares y subventrales, patas mesotorácicas
iguales a las protorácicas. Tercer segmento
torácico similar al mesotórax; segmentos ab-
dominales 1 y 2 (Fig. 7) con 8 scoli similar a los

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. “Tomo 56, 1985.

segmentos torácicos, el espiráculo queda so-
bre los scoli subespiraculares y supraespiracu-
lares, tercer al sexto segmento abdominal (Fig.
7) no presenta scoli subventrales, espiráculo
queda entre los scoli supraespiraculares y su-
bespiraculares; séptimo segmento abdominal
similar al primero; octavo segmento abdomi-
nal con 7 scoli, con un sculus dorsal en la línea
media, el espiráculo queda entre los scoli su-
praespiracular y subespiracular, y es algo
mayor en tamaño al resto. Noveno segmento
abdominal con 7 scoli, con uno dorsal apegado
a la línea media y algo más atrás, con respecto
a la línea de los scoli restantes (2 subventrales y
2 supraespiraculares); décimo segmento ab-
dominal con el borde posterior subcircular.
Las patas abdominales van desde el tercer al
sexto segmento abdominal, con crochets (Fig.
5) que se distribuyen y nacen en el borde inter-
no de los espuripedios a la forma de media
luna, son biordinales y uniseriales; el borde
lateral externo de los espuripedios con una
corrida de cerdas. Patas anales con crochets
similares a patas abdominales y con dos corri-
das de cerdas en el borde lateral externo.

Pupa (Figs. 9-11): Obtecta de 30 mm de largo y
11,10 mm en su ancho máximo, de color casta-
ño rojizo ennegrecido; de aspecto subpirifor-
me; en vista ventral (Fig. 9) las pterotecas (ptt)
alcanzan casi el término del segmento abdomi-
nal 4. Frente (fr) subrectangular, a ambos la-
dos del clypeus-labrum (clp-lbr) y de los dos
tercios inferiores de la frente se encuentran
las genas (ge) subcuadrangulares, a continua-
ción los ojos (o) semicirculares. Bajo el cly-
peus-labrum y los ojos se encuentran los pal-
pos labiales (plb) subtriangulares; lateralmen-
te a éstos y sobre los ojos nace la espiritrompa
(espp) con sus dos ramas fusiformes. Á cada
lado del tercio apical de la frente y detrás de
los ojos nacen las cerotecas (cer) que se dirigen
hacia la línea media finalizando antes del tér-
mino de las pterotecas, a un tercio de éste a la
altura del término del segundo segmento ab-
dominal (se observa en vista ventral, Fig. 9),
lateralmente (Fig. 10) las pterotecas 2, al avan-
zar hacia la línea media casi tocan el límite del
término del segmento abdominal 4, las ptero-
tecas 3 finalizan en la tercera parte superior

133

del segmento abdominal 4. Del cuarto al sexto
segmento se observan dos prominencias en la
región medial de cada uno de ellos pero éstos
están débilmente marcados en el cuarto seg-
mento (lo que parece ser las impresiones deja-
das por las patas abdominales de la larva). En
el octavo y noveno segmentos se encuentran
las diferencias correspondientes a los sexos,
en la hembra (Fig. 17) los segmentos termina-
les (octavo y noveno) no presentan en sus bor-
des inflexiones, la abertura genital (abg) se
encuentra en el centro del segmento abdomi-
nal 8, la abertura del ovopositor (aovp) está
justo en el límite y en posición media de los
segmentos abdominales octavo y noveno; la
abertura anal (aa) se encuentra en el centro
del segmento abdominal 10; en el macho (Fig.
16) el segmento abdominal 9 presenta una
inflexión o escotadura en su borde superior
sobre el cual se encuentra la abertura genital,
en el segmento abdominal 10 y de posición
media se encuentra la abertura anal. En ma-
cho y hembra en el décimo segmento abdomi-
nal terminan en un ápice algo agudo e irregu-
lar donde se encuentra el cremáster (cre) for-
mado por crochets de número muy variable.
La pleura es visible (Fig. 10) en los interseg-
mentos cuarto y quinto, quinto y sexto, sexto y
séptimo, y está adornada con granulaciones
regulares (estriaciones finas). En vista dorsal
(Fig. 11) el pronotum es subsemicircular, el
mesonotum es el doble del largo del prono-
tum (en vista lateral, Fig. 10); el metatórax
tiene la mitad del largo del mesotórax, subi-
gual a la longitud del pronotum; posterior-
mente se observan todos los segmentos corpo-
rales. En vista lateral (Fig. 10) se observan los
espiráculos que tienen forma ovalada, son ne-
gros en su interior a excepción de los bordes
que son concoloros a la pupa y de las aberturas
que son castaño claras, éstos están ubicados en
la región medial de cada segmento. Los espi-
ráculos están ausentes en el primero, noveno y
décimo segmentos corporales.

Desarrollo (Fig. 18): Los huevos aparecen a
fines de febrero y permanecen hasta comien-
zos de septiembre, las larvas se desarrollan
desde comienzos de agosto hasta fines de di-
ciembre, después éstas pupan, con un período

134

que va desde noviembre a marzo, los adultos
comienzan a emerger a fines de enero y su
número comienza a disminuir a principios de
junio.

MATERIAL EXAMINADO

Los huevos fueron obtenidos de crianzas reali-
zadas en el Laboratorio de Entomología de la
Universidad de Concepción; 14 larvas, Hual-
pén-Provincia de Concepción, 10 de febrero-
1984, Angulo coll.; 4 pupas, Hualpén-
Provincia de Concepción, 10 de febrero-
1984, Angulo coll.; 32 pupas que se mantuvie-
ron en crianza.

Catocephala marginata (Philippi)
(Figs. 7-8, 15 y 18)

Ormiscodes marginata Philippi, 1859, p. 1108,
Valdivia

Catocephala marginata (Philippi) Field (¿no pu-
blicado?) :

Complejo Hipofaríngeo (Figs. 8 y 15): Palpo la-
bial-2 presenta el segmento splb, 7 veces
mayor al splb>; cerda estipular corta y gruesa,
más larga que cplb, y subigual a cplb>; hendi-
dura transversal media notable, separando la
región distal y proximal; espinerete de ápice
trunco pero escotado, en vista dorsal (Fig. 15)
el espinerete con los lados subconvergentes en
su tercio apical, el ápice es circular con bordes
regulares, el extremo más apical lleva dos cer-
das cortas que nacen de un mismo punto. La
placa basal alcanza más o menos la mitad de
éste.

Desarrollo (Fig. 18): Los huevos se hacen pre-
sentes desde junio a noviembre, mes en el cual
comienzan a aparecer las larvas, ya en febrero
pupan (período en que finaliza este estado de
desarrollo), las pupas continúan hasta abril; ya
a mediados del desarrollo pupal comienzan a
emerger los primeros adultos, los que perma-
necen en actividad hasta junio.

MATERIAL EXAMINADO

Cinco larvas y 2 pupas de Concepción, Angulo
coll.; 20 pupas que se mantuvieron en crianza

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

en el Laboratorio de Entomología de la Uni-
versidad de Concepción.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

En el ciclo de desarrollo de ambas especies
(Fig. 18), se observa que ambas presentan una
generación al año, univoltinas, y el huevo de
amplia duración, lo cual le permite pasar los
meses fríos y lluviosos.

En Ormiscodes cinnamomea (Feisthamel) es
más evidente el período de duración más lar-
go en cada estado de desarrollo, existiendo la
posibilidad de un mayor parasitismo al cual se
puede ver afectado, en sus diferentes estadios.

Ambas especies, en general, habitan los
mismos hospedadores (simpátricas): pino,
sauce y álamo. Como habitan en mesoneros
comunes y poseen características estructurales
semejantes, es fácil confundirlas, más espe-
cialmente en el estado larval (fitófaga), por
ello, en este trabajo se entregan caracteres de
diagnóstico diferenciales en los estados de de-
sarrollo considerados (Tablas IA y IB) (to-
mando como base de comparación, en lo que
respecta a la especie C. marginata (Phil.), el
trabajo de Angulo y Weigert de 1974, desta-
cando el hecho de que hay caracteres de im-
portancia taxonómica probados fehaciente-
mente por algunos autores (Crumb, 1957;
Beck, 1960; Godfrey, 1972, etc.), como lo es:
el complejo hipofaríngeo. Es así que este ca-
rácter es usado con seguridad para discrimi-
nar de una u otra especie en el estado larval.
En el estado pupa es difícil poder dar caracte-
res que diferencien a una de la otra especie,
pues, en general, se asemejan mucho. Pero al
diferenciar sexos, las disimilitudes se hacen
más evidentes, recursos mediante el cual se
distinguirían las dos especies, aún más, no hay
que olvidar que las especies pupan general-
mente en el lugar del cual se alimentan.

Asimismo, hay que hacer notar que algunas
pupas representan remanentes de los scoli,
llamados verruca, pero en general este carác-
ter es muy variable, pues del material analiza-
do se pudo comprobar que a veces están pre-
sentes (en forma completa o incompleta) y en
otras ausentes.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 135

Tabla I A
Caracteres diagnósticos diferenciales en larva

O. cinnamomea (Feist.) C. marginata (Phil.)

Estructura
larvales

Sutura frontal alcanza las 2 terceras
partes del alto de la cabeza

Sutura frontal alcanza la mitad
del alto de la cabeza

Cabeza

Segmento distal subigual al basal Segmento distal 1,3 veces más

Antenas largo que el basal

splb; 4 veces mayor a splbs splb, 7 veces mayor a splb»

Palpo labial-2

Gruesa 5 veces mayor a cplb; y la
mitad de cplb»

Gruesa 3 veces mayor a cplb; y

Cerda estipular subigual a cplba

Con los lados subconvergentes en
toda su longitud

Con los lados subconvergentes

Espinerete vista 7 ) ;
sólo en el tercio más apical

dorsal

Placa basal del
espinerete

Alcanza 2/3 del espinerete Alcanza la mitad del espinerete

Trunco y escotado, circular de bor-
des regulares

Trunco y escotado, ovalado, con

Apice espinerete
P E 2 cerdas cortas en el extremo

Tabla I B
Caracteres diagnósticos diferenciales en pupa

O. cinnamomea (Feist.) C. marginata (Phil.)
Estructuras

de la pupa

Finalizan poco antes del límite pos-
terior del 4? segmento abdominal

Pterotecas-2 Finalizan en la mitad del 4” seg-

mento abdominal
Subcuadrado

En el borde posterior del 8” seg-
mento abdominal (inflexión)

Clypeus-labrum Subtriangular

Abertura genital $ En el centro del 8 segmento abdo-

minal

En el límite de la inflexión o escota-
dura del 9” segmento abdominal

Abertura genital SN En el centro del 9? segmento ab-

dominal

Mesonotum Más del doble del pronotum

Doble del pronotum

136

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

0M Dar» 20N

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

mm 6

. Cabeza de larva de Ormiscodes cinnamomea (Feist.), en vista frontal.

. Sculus de larva de Ormiscodes cinnamomea (Feist.).

. Antena de larva de Ormiscodes cinnamomea (Feist.).

. Mandíbula derecha de larva de Ormiscodes cinnamomea (Feist.).

. Crochets podiales de larva de Ormiscodes cinnamomea (Feist.).

. Complejo hipofaríngeo de la larva de Ormiscodes cinnamomea (Feist.).
. Distribución de los scoli en el cuerpo de las larvas de ambas especies.
. Complejo hipofaríngeo de la larva de Catocephala marginata (Phil.).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 137

Fig. 9. Vista ventral de la pupa de Ormiscodes cinnamomea (Feist.)
Fig. 10. Vista lateral de la pupa de Ormiscodes cinnamomea (Feist.).
Fig. 11. Vista dorsal de la pupa de Ormiscodes cinnamomea (Feist.)

138 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

YZZZZZZA Ormiscodes cinnamo mea (Feist)

EEE Catocephala marginata (Phili.)

Fig. 12. Postura de los huevos de Ormascodes cinnamomea (Feist.).

Fig. 13. Región de la micropila (polo animal) del huevo de Ormiscodes connamomea (Feist.).
Fig. 14. Vista dorsal del espinerete de Ormiscodes cinnamomea (Feist.).

Fig. 15. Vista dorsal del espinerete de Catocephala marginata (Phil.).

Fig. 16. Terminalia de pupa del macho de O. cinnamomea (Feist.).

Fig. 17. Terminalia de pupa de la hembra de O. cinnamomea (Feist.).

Fig. 18. Cuadro comparativo de los ciclos de desarrollo de ambas especies.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

139

AGRADECIMIENTOS

El presente trabajo se llevó a cabo gracias al: apoyo económico de la Dirección de Investiga-
ción (Proyecto D.I. 20.38.03) de la Universidad de Concepción.

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p:

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 141-144, 1985.

AVES OBSERVADAS Y CAPTURADAS EN TRAMOS DE
LA CARRETERA AUSTRAL (CHILE) CON NUEVAS LOCALIDADES

Birds observed and captured in sections of the Carretera Austral (Chile)
with new localities

HECTOR OYARZO R.* y TOMAS CEKALOVIC K.*+*

RESUMEN

Se entrega la lista con 67 especies de aves provenientes de
la Carretera Austral entre los 41930'S y 42%54'S, aportán-
do nuevas localidades para Mimus thenca Molina “tenca”,
Pyrope pyrope fortis Philippi y Johnson “diucón de Chiloé” y
Garrodia nereis (Gould), “golondrina de mar subantártica”.

INTRODUCCION

En los días comprendidos entre el 26 de enero
al 9 de febrero de 1982, miembros del Depar-
tamento de Zoología de la Facultad de Cien-
cias Biológicas y Recursos Naturales de la Uni-
versidad de Concepción, efectuaron la “Ter-
cera Expedición a la Carretera Austral” como
parte del Proyecto VIC N? 20.38.01, “Catas-
tro faunístico de Chile, parte III”. Desafortu-

*Depto. de Zoología, Facultad de Ciencias Biológicas y de
Recursos Naturales, Casilla 2407, Universidad de Con-
cepción, Chile.

**Conservador de Museo, Depto. de Zoología, Facultad
de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Casilla
2407, Universidad de Concepción, Chile.

ABSTRACT

This listing contains 67 species of birds from the
Carretera Austral between 41%30'S and 42%54'S, with new
localities for Mimus thenca Molina, “Chilean
mockingbird”, Pyrope pyrope fortis Philippi and Johnson,
“fire-eyed diucón of Chiloé” and Garrodia nereis (Gould),
“gray-backed storm petrel”.

Keywords: Aves. Geographical distribution. Neotropical
Region. Chile.

nadamente factores climáticos impidieron que
el plan original se cumpliera en su totalidad,
por lo tanto la actividad se centró sólo en algu-
nos sectores señalados en el mapa.

La captura de aves se efectuó mediante el
uso de: escopeta calibre 16, rifle neumático (a
postón), calibre 4,5 y dos redes ornitológicas
de fabricación japonesa. Las observaciones vi-
suales se realizaron con prismático 7 X 35.
Todos los ejemplares capturados fueron pro-
tocolizados y preparados en terreno, luego,
una vez identificados, se depositaron en el
Museo de Zoología de la Universidad de Con-
cepción (MZUC).

Se entrega a continuación la lista completa
de las aves capturadas y observadas.

149 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

AVES OBSERVADAS Y CAPTURADAS EN LA TERCERA EXPEDICION
A LA CARRETERA AUSTRAL.

l 2 3 4 5 6 7

PODICIPEDIDAE
Podiceps major pd Ml Ed ES pS Na peo

DIOMEDEIDAE
Diomedea melanophris == pe me pes cele Bo X

PROCELLARIIDAE

Procellaría aequinoctialas AAMROASAGE PE X
Macronectes halla Hs E o E 7 X
Puffinus creatopus A, E X
Puffinus griseus + == E pea E EUA X

OCEANITIDAE

Oceamites oceanicus Eve 18 PLE poa EN pe. X
Fregetta tropica 0 sa Je ae pe q: X
Garrodia nereis E A EA zed pe X

PELECANOIDIDAE
Pelecanoides magellan: Lt alo 4 Y pres e EE X

PHALACROCORACIDAE
Phalacrocorax olivaceus Xx XxX
Phalacrocorax gaimarda pel X qn qn PES E, pata
Phalacrocorax atriceps Xx X

ARDEIDAE

Nycticorax nycticorax obscurus => C Eolo CE xs a pe

THRESKIORNITHIDAE
Theristicus caudatus melanopas XxX XxX — = XxX E
Plegadis chiha o E X Eee

ANATIDAE

Cygnus melancoryphus Ec sd X
Chloephaga hybrida hr dd st X X gut
Anas spimcauda fas a X X

Anas sibilatrix pal fed pra C
Merganetta armata X abel E NA pa
Tachyeres patachonicus o a E

CATHARTIDAE
Coragyps atratus = = AS a Je es

ACCIPITRIDAE
Accipiter bicolor pda Xx Ena pei poto Jeldo. pers

FALCONIDAE
Polyborus plancus = XxX X X — XxX —

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Phalcoboenus australis
Milvago chimango temucoensis
Falco sparvertus cinnamominus
HAEMATOPODIDAE
Haematopus palliatus pitanay

CHARADRIIDAE
Vanellus chilensis fretensis
Zonibix modestus

SCOLOPACIDAE
Limosa haemastica
Calidris alba
Numentus phaeopus

PHALAROPODIDAE
Phalaropus fulicarius

LARIDAE
Stercorarius parasiticus
Larus dominicanus
Larus maculipennas
Larus pipixcan

COLUMBIDAE
Columba araucana

PSITTACIDAE
Micropsittace ferruginea minor

TROCHILIDAE
Sepanordes galeritus

ALCEDINIDAE
Ceryle torquata stellata

PICIDAE
Colaptes pitvus cachinans
Picordes lignarius

FURNARIIDAE

Cinclodes oustaleti oustaleti
Cinclodes fuscus fuscus
Syluiorthorynchus desmursú
Aphrastura spinicauda spinicauda
Pygarrichas albogularis

RHINOCRYPTIDAE
Pteroptochus tarnú
Scelorchilus rubecola

TYRANIIDAE
Pyrope pyrope fortis

Muscisaxicola macloviana mentalis

Oo

(|

A

ARK

E O

(2

SOS eS

O

A |

A

e

144

Lessonia rufa rufa
Elaena albiceps chilensis

TROGLODYTIDAE
Troglodytes aedon chilensis

HIRUNDINIDAE
Notiochelidon cyanoleuca patagonica
Tachycineta leucopyga

MIMIDAE

Mimus thenca

MUSCICAPIDAE
Turdus falklanda magellanicus

EMBERIZIDAE
Curaeus curaeus curaeus

FRINGILLIDAE
Carduelis barbatus
Sicalas luteola luterventris
Diuca diuca diuca
Phryguus patagonicus

Fig. 1. Mapa de ubicación de las localidades de captura y
observación.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

l 2 3 4 5 6 7

25. Y yb AN C HA.
A a O iS Ad
A
XCAM tl MANE
= X= Xx iia
e de, EI In SL pe C Ab Ye
E A A A O —
A O NE E a —
E A ea No —
AO O —
EE C A e de pl pa
O E A e —

Localidades: 1) Lenca (41937'S; 72%40'"W); 2)
Yerbas Buenas (Caleta La Arena (41%40'S;
72%39'W); 3) Chaitén (42%54'S; 72%45'"W); 4)
Río Yelcho (Estuario) (42%58'S; 72%45'"W); 5)
Puerto Cárdenas (43713'S; 72%29'W); 6) Lago
Yelcho (La Cabaña), (43%20'S; 72%16'W); 7)
Golfo Ancud (Tramo Chaitén-Puerto Montt),
(42%05' 7300'"W). Aves observadas = X; Aves
capturadas = C. (Ver mapa).

CONCLUSIONES

Se da a conocer por primera vez una lista de
aves presentes en un tramo de la Carretera
Austral, y es importante destacar nuevas loca-
lidades para tres especies: Pyrope pyrope fortas
Philippi y Johnson, Mimus thenca Molina y Ga-
rrodia nereis (Gould).

BIBLIOGRAFIA

PhiLiPPI, B.R.A. 1964. Catálogo de las Aves Chilenas con
su distribución geográfica. Inv. Zool. Chilenas. 11:
1-79.

VENEGAS, C. 1982. Suplemento a la Guía de Campo para
las aves de Magallanes. Ans. Inst. Pat. Punta Arenas.
13: 190-206.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 145-149, 1985.

ANALISIS DE LA POSICION TAXONOMICA DE
CHLORIDEA CHILENSIS HAMPSON, 1903,
NOCTUIDO NATIVO DE IMPORTANCIA ECONOMICA
(LEPIDOPTERA: NOCTUIDAE).

Analysis of the taxonomic position of Chloridea chilensis
Hampson, 1903, a native noctuid moth of economic importance
(Lepidoptera: Noctuidae).

CARMEN JANA-SAENZ y ANDRES O. ANGULO*

RESUMEN

Se aclara la posición taxonómica de Chloridea chilensis
Hampson, 1903 (Lepidoptera: Noctuidae), cuyo status
sistemático resulta ser: Heliothis (Chloridea) chilensis
(Hampson, 1903), de acuerdo a los resultados obtenidos
del análisis de la genitalia del macho y la hembra, de la
ornamentación de las patas protorácicas y de la macula-
ción alar.

INTRODUCCION

El complejo de los gusanos del maíz, represen-
tado principalmente por las especies Heliothis
ze0 (Boddie, 1850) y Heliothiss armigera (Huúb-
ner, 1827), constituye en el mundo una de las
mayores plagas perjudiciales que atacan no
sólo al maíz, sino también a los cultivos de
frejoles, arvejas, algodón y otras plantas culti-
vadas; los daños que ocasionan las larvas tie-
nen gran significado en la economía de la agri-

*Departamento de Zoología. Facultad de Ciencias Bioló-
gicas y de Recursos Naturales. Casilla 2407. Universidad
de Concepción. Concepción-CHILE.

ABSTRACT

The analysis of male and female genitalia, prothoracic
appendages and wing pattern of Chloridea chilensis
Hampson, 1903 revealts it 15 actually Heliothis (Chloridea)
chilensis (Hampson, 1903).

Keywords. Lepidoptera. Noctuidae. Heliothis.

Systematics. Chile.

cultura mundial, por lo cual es un grupo que
constantemente se está investigando. Ásocia-
dos a ellos existen también numerosas espe-
cies que pertenecen al complejo y que también
ocasionan daño en los cultivos, pero en menor
escala. Dentro de estas especies se encuentra
Chloridea chilensis Hampson, 1903, que se dis-
tribuye en la zona central de Chile.

Desde la descripción original de Ch. chilen-
sis, ningún autor ha hecho referencia alguna
de ella, por lo que su status taxonómico es
débil e incierto, siendo el motivo del presente
trabajo dilucidar la posición taxonómica de
esta especie.

146

MATERIALES Y METODOS

En el presente trabajo se usaron especímenes
de las colecciones CICA y PEÑA, que se en-
cuentran depositadas en calidad de préstamo
en el Museo de Zoología de la Facultad de
Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales
de la Universidad de Concepción (MZUC). El
material estudiado se puede desglosar de la
siguiente manera: 3 machos y 5 hembras.

Abreviaturas usadas:

A = vena anal

Aa = apófisis anterior

Ab = apéndice bursae

Ae = aedagus

Ap = apófisis posterior

Ar = areola

ce = cerdas

Cel : = celda

CICA = Colección del Centro de Investiga-

ción y Capacitación Agrícola en

Arica
Cl = clásper
Cuc = cuccullus
Cu = vena cubital
CV. = costa valvar
DB = ductus bursae
Ds = ductus seminalis
Es = espinas
Fe = fémur
Ga = garra
Mi = vena medial
Peña = Colección particular Luis E. Peña,
Santiago '
R = vena radial
Rs = vena radial sectorial
Sa = saccus
Sac = saccullus
Sc = vena subcostal
Si = signum
Ta = tarso
Ti = tibia
Va = valva
Ve = vésica
Vu = vulva

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

RESULTADOS

Heliothis (Chloridea) chilensis Hampson, n.
comb.

Chloridea chilensis Hampson, 1903

Tipo: 2 machos y 1 hembra, Coquimbo (J.].
Walker), depositados en el British Museum,
constituyen el material sintípico (non vide).

Diagnosis:

Proboscis muy desarrollada, palpos oblicuos.
Cabeza y tórax con escamas ocráceas, de ápice
rosado. Ala anterior oliva ocrácea, área costal
rosada, mancha orbicular pequeña y castaña,
mancha reniforme subrectangular castaña,
mancha claviforme blanca; tibia de la pata
protorácica con escamas rosadas, valva con
clásper.

Redescripción:

Macho (Fig. 1). Cabeza: antenas provistas de
cilios escasamente más cortos que el segmento
correspondiente, palpos labiales oblicuos,
provistos de escamas ocráceas, con algunas
escamas rosadas en su cara anterior; frente
algo bulbosa, con escamas piliformes ocráceas
de ápice rosado. Tórax: dorso del tórax con
escamas y escamas piliformes concoloras con
las de la cabeza, a los lados lleva escamas pili-
formes ocráceas. Patas (Fig. 2): con escamas
ocráceas y castañas, en la cara externa de las
tibias hay escamas y escamas piliformes rosa-
das, ápice de las tibias protorácicas con dos
garras algo agudas, la externa el doble del
largo de la interna, uñas bífidas, la rama inter-
na muy corta. Ala anterior: oliva ocrácea, área
costal rosada; banda subbasal con escamas de
color castaño, en la región medial excurvada;
banda anterior transversa castaña y en la re-
gión medial excurvada; banda mediana casta-
ña y pasa al lado interno de la reniforme;
banda posterior transversa castaña y pasa al
lado externo de la reniforme; banda terminal
castaña, y en su trayecto medial cortamente
excurvada; banda subterminal castaña, en el
primer tercio de su trayecto es excurvada, lue-
go incurvada y posteriormente recta. Mancha
apical de color castaño y subcuadrangular;

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

mancha reniforme subrectangular y castaña;
mancha orbicular pequeña, ovalada y de color
castaño; mancha claviforme subtriangular, de
ápice redondeado, de color blanco, rodeada
por escamas castañas, ubicada en el tercio api-
cal de la banda subbasal. Cilias rosadas. Ala
posterior: ocrácea, las venas remarcadas con
castaño; tercio distal del ala castaño. Venación
alar (Figs. 3 y 4). Genitalsa (Fig. 5): uncus cur-
vado, en el ápice se atenúa y forma una espina
algo curvada. Valvas alargadas, 10 veces más
largas que su ancho medial, con ápices redon-
deado. Cucullus provisto de gruesas cerdas
agrupadas en la porción distal. Costa valva
provista de cerdas de un poco más de la mitad
del ancho medial de la valva. En la región
póstero-ventral del sacculus se encuentran
tres cerdas de diferentes tamaños; la mediana
es la mitad del largo de la mayor y el doble de
la menor; sacculus con clásper delgado y que
alcanza al tercio basal de la valva; saccus sensi-
blemente triangular. Aedeagus (Figs. 6 y 7):
alargado y uniformemente ancho, en su ápice
ventral posee pequeñas espinas; vésicas 4 ve-
ces más larga que el aedeagus, con pequeñas
espinas en su parte media.

Hembra (Fig. 8): Similar al macho; antenas
provistas de cortos cilios apenas visibles. Alas
posteriores castaño claro más o menos unifor-
mes (no existe la brusca transición entre el
color oscuro del borde y el claro de la base).

Genttalia: (Fig. 9): apófisis posteriores y ante-
riores subiguales en largo; vulva uniforme-
mente angosta. Ductus bursae 4 veces más
largo que la vulva; bursa copulatrix globosa,
con dos bandas transversales de microespinas
(sigma) en el tercio superior. Apendix bursae
helicoidal, subigual en longitud a la bursa co-
pulatrix, internamente fuertemente escleroti-
zado, del ápice del apendix bursae se abre el
ductus seminalis.

Medidas: Longitud promedio del ala anterior:
28,5 mm.

Período de vuelo: agosto y noviembre.
Distribución geográfica: Zona Central de Chile.

Material examinado: 3 machos y 5 hembras.
1 macho (1 gen prep. N* 403), 24-X-51,

147

Guayacán, Santiago, T. Ramírez (CICA); 1
macho, ?-XI-1966, Rinconada, Maipú, Prov.
Santiago Chile. Black light; 1 macho (PENA);
1 macho, 12-8-61 (CICA), SIN LOCALIDAD;
2 hembras (1 gen. prep. N* 403), 24-X-51,
Guayacán, Santiago, T. Ramírez (CICA); 1
hembra, 24-8-61 (CICA) SIN LOCALIDAD;
2 hembras, 12-8-61 (CICA) SIN LOCA-
LIDAD.

DISCUSION Y CONCLUSION

Hardwick, 1965, al estudiar las especies del
complejo del gusano del maíz, crea con un
grupo de ellas el género Helicoverpa; en ese
mismo año Bursin, (fide, Viette, 1967) indica
que el nuevo género de Helicoverpa es sinóni-
mo de Heliothis. Este género se caracteriza de
manera notable por la vésica dispuesta en for-
ma espiralada. Viette, 1967, al estudiar las
especies correspondientes de Madagascar, es-
tablece que las especies agrupadas en el géne-
ro Helicoverpa de Hardwick son muy homogé-
neas, por lo tanto constituirían un subgénero
de Helothis; así, dicho género quedaría forma-
do por dos subgéneros: Heliothis (Helvothis) y

Fig. 1. Vista dorsal del macho de Heliothis (Chloridea)
chilensis.
Fig. 8. Vista dorsal de la hembra de Helothis (Chloridea)

chilensis.

148 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Fig. 2. Pata protorácica del macho (Vista lateral).
Figs. 3 y 4. Venación alar del macho.
Fig. 5. Esquema de la genitalia del macho.

Figs. 6 y 7. Vista lateral y frontal del órgano copulador del macho.
Fig. 9. Genitalia de la hembra.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Heliothis (Helicoverpa). El subgénero (Heliothis)
se caracteriza en forma relevante porque la
vésica del macho es inerme y su valva no posee
clásper, en cambio el subgénero (Helicoverpa)
posee la vésica armada de grandes espinas
dispuestas en una serie longitudinal y la valva
tampoco presenta clásper.

La especie Chloridea chilensis a pesar de per-
tenecer a este complejo por las características
de su morfología externa y por presentar la
vésica espiralada armada de microespinas dis-
persas en toda su superficie, sus valvas presen-
tan clásper. Característica que también pre-
senta la especie Heliothis posttriphaena (W.
Roths Child., 1924) de Madagascar Viette, op.
cit. Siendo éstas las dos únicas especies del
complejo que presentan clásper, Viette pro-
pone crear un nuevo género para postiri-
phaena.

149

A fin de mantener la estabilidad en el esta-
tus sistemático del género y del complejo mis-
mo, es necesario ampliar las características del
género Heliwothis y crear un tercer subgénero.

Para el nombre de este nuevo taxón se con-
sidera el género Chloridea bajo el cual fueron
descritas las especies chilensis y posttriphaena, en
consecuencia ambas especies quedan incluidas
en el género Heliothis y en el subgénero Chlor:-
dea y serían nominadas así:

Heliothis (Chloridea) chilensis mn. comb.
Helwthis (Chloridea) posttriphaena n. comb.

Por tanto, el género Heliothis estaría formado
por tres subgéneros: Helwthis, Helicoverpa y
Chloridea.

BIBLIOGRAFIA

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lombia. Bol. Téc. Bogotá 2: 1-64.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 151-159, 1985.

ESPERMIOHISTOGENESIS EN NETA CHILENSIS (WALKER)
(DIPTERA: BRACHYCERA)

Spermiogenesis in Neta chilensis (Walker) (Diptera: Brachycera)

EUGENIA A. REYES*, MANUEL E. ALMONACID*, IVONNE HERMOSILLA* Y ANDRES O. ANGULO**

RESUMEN

Se analizan los elementos estructurales que participan en
la espemiohistogénesis de Neta chilensis (Walker) (Diptera:
Brachycera). Se observa durante este proceso las transfor-
maciones que ocurren en las espermátidas y que se inician
con la formación de una vesícula acrosomal, dentro de la
cual es posible distinguir un material heterogéneo y que
en la espermátida tardía llega a ser morfológicamente
diferente. Al final del proceso se forma un acrosoma
cónico como resultado de fuerzas morfogenéticas intrín-
secas al acrosoma.

Simultáneamente, el núcleo experimenta una gradual
elongación con formación de masas cromatínicas cada vez
más densas y que culmina con la organización de cordones
tortuosos y compactos. En el tercio posterior de la cabeza
del espermatozoide se inserta el flagelo; el axonema tiene
el patrón microtubular convencional de 9 + 2.

Por otro lado, las mitocondrias forman en la espermá-
tida joven el cuerpo mitocondrial (“nebenkern”), el cual se
transforma posteriormente en dos derivados mitocon-
driales, los que migran hacia el flagelo en formación.

Keywords: Spermiogenesis. Diptera Brachycera. Neo-
tropics.

*Depto. de Biología Molecular.

**Depto. de Zoología, Facultad de Ciencias Biológias y de
Recursos Naturales, Universidad de Concepción, Casilla
2407, Concepción, Chile, S.A.

La presente investigación forma parte del Proyecto
N? 2.08.94 de la Dirección de Investigación, Universidad
de Concepción.

ABSTRACT

The ultrastructural elements participating in the
spermiogenesis of Neta chilensis (Walker) (Diptera:
Brachycera) are presented. In early spermiogenesis, an
acrosomal vesicle is formed with a heterogeneous material
filling its interior; later, the vesicle becomes morpholog-
ically distinct. The final acrosome has a conical shape as a
result of morphogenetic forces within the acrosomal
vesicle.

Simultaneously, a gradual elongation of the nucleus
takes place and masses of increasing packed chromatin
are formed, all of which culminates with the formation of
tortuous and compact cords. The flagellum is inserted in
the third posterior of the spermatozoon head. The
axoneme has the conventional 9 + 2 microtubular
pattern.

On the other hand, the mitochondria of the early
spermatid form the “nebenkern”, from which two
mitochondrial derivatives are later formed which migrate
to the forming flagellum.

INTRODUCCION

Neta chilensis (Walker) es un díptero de la Fa-
milia Calliphoridae autóctono del cono sur del
continente americano, de gran tamaño, solita-
rio, con dimorfismo sexual acentuado. Los
machos son notoriamente más grandes que las
hembras, alcanzando un largo aproximado de
16 a 18 milímetros (Reyes y Almonacid, 1984).

152

Los cambios ultraestructurales durante la
espermiohistogénesis en dípteros han sido es-
tudiados en varias especies, destacando el
gran número de trabajos realizados en Drosop-
hila melanogaster (Cooper, 1950; Shoup, 1967;
Bairati and Perotti, 1970; Stanley et al., 1972;
Tokuyasa, 1974; Wilkinson et al., 1974; Ha-
bliston et al., 1977), los cuales permiten hoy en
día tener un conocimiento avanzado de los
procesos de diferenciación de las células ger-
minales en estos insectos. Considerando la
amplia distribución de N. chilensis y el escaso
estudio que se ha realizado en este díptero, se
ha continuado investigando este organismo
en nuestro laboratorio. Ha parecido intere-
sante examinar la espermiohistogénesis con el
objetivo de caracterizar los procesos diferen-
ciativos generales en relación a: acrosoma, nú-
cleo, mitocondrias y axonema.

MATERIALES Y METODO

Testículos de machos adultos de N. chilensis
(Walker) mantenidos en laboratorio (Reyes y
Almonacid, 1984) fueron disecados y prepa-
rados para microscopía electrónica. Pequeñas
muestras tratadas para microscopía de trans-
misión (TEM), fueron fijadas en glutaraldehi-
do al 2,5% en buffer fosfato 0,025 M (pH 7,4)
y luego en tetróxido de osmio al 1% en buffer
fosfato 0,1 M (pH 7,4) para incluir posterior-
mente en Epon-Araldita. Los cortes de 400Á
de espesor fueron doblemente teñidos en ace-
tato de uranilo y citrato de plomo para final-
mente ser observados en un microscopio elec-
trónico Philips EM 200.

Para miscroscopía electrónica de barrido
(SEM), luego de la postfijación en tetróxido
de osmio, las muestras fueron deshidratadas
en una serie de acetonas de concentración cre-
ciente, sometidas a secado en punto crítico
(CO) y cubiertas con una capa de oro en un
metalizador Edwards S150. La observación se
realizó en un microscopio electrónico Siemens
Etec Autoscan U-1.

RESULTADOS

1. DESCRIPCIÓN MORFOLÓGICA DE
LOS TESTÍCULOS

Los testículos de N. chilensis son estructuras

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

AA

Írmm

Fig. 1. Morfología del testículo de N. chilensis
ft = filamento terminal; t = testículo;
cg = cuerpo graso; vd = vaso deferente.

tubulares y uniformes en todo su diámetro
(Fig. 1). Comienzan con un corto filamento
terminal de 0,86 mm de largo, subcónico alar-
gado; luego el largo tubo testicular (de
16,0 mm de longitud y 0,51 mm de diámetro)
se enrolla desordenadamente sobre sí mismo
sin llegar a formar un ovillo o masa compacta.
En su porción terminal se encuentra cubierto
por tejido graso (cuerpo graso). A continua-
ción se encuentra el vaso deferente, el cual es
relativamente corto (1,85 mm de largo) y que
se va atenuando en su diámetro, el que se hace
cada vez menor a medida que se acerca al
extremo por donde se conecta al otro vaso
deferente.

Los cortes realizados a lo largo del testículo
evidencian una madurez progresiva en senti-
do antero-posterior, apareciendo la organiza-
ción típica de los túbulos seminíferos, en los
cuales se disponen los cistos espermatogénicos
(Fig. 2) limitados por una sola capa de células

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

de Sertoli. Las células germinales dentro de
un cisto se desarrollan sincrónicamente. En
los túbulos es posible identificar todos los esta-
dos de la espermatogénesis.

2. ASPECTOS MORFOLÓGICOS Y CITOLÓGICOS
DE LA ESPERMIOHISTOGÉNESIS

La espermátida temprana y la espermátida
tardía de N. chilensis tienen características ge-
nerales semejantes a las de la mayoría de los
insectos en cuanto a la diferenciación del acro-
soma, mitocondrias, núcleo y flagelo.

2.1. Acrosoma

Esta estructura inicia su diferenciación por
separación de pequeñas vesículas del aparato
de Golgi. Espermátidas tempranas muestran
ya coalescencia de estas vesículas, las que gra-
dualmente van constituyendo la vesícula proa-
crosómica, cuyo material interno electrodenso
muestra pequeñas zonas translúcidas. Poste-
riormente, el material interno llega a ser más
denso y compacto a través del complejo acro-
somal (Fig. 3). A medida que esto sucede, el
sistema acrosomal pasa a la siguiente fase, la
fase del sombrero o capuchón definiendo la
polaridad de la espermátida. Su extremo cefá-
lico protruye causando la elongación del acro-
soma que se observa cubierto por una doble
membrana (Fig. 4). En la espermátida avanza-
da y en el espermatozoide adquiere forma
cónica con un extremo anterior de gran densi-
dad electrónica (Fig. 5).

2.2. Mitocondrias

En las espermátidas tempranas de muchos in-
sectos las mitocondrias se agregan y forman
un solo cuerpo llamado cuerpo mitocondrial o
NEBENKERN (Pratt, 1970). En secciones de
“nebenkern” vistas a la microscopía electróni-
ca se observa que este cuerpo está formado de
varias mitocondrias (Fig. 6).

El cuerpo mitocondrial se encuentra vecino
al núcleo (de ahí su denominación). Un “ne-
benkern” recién formado es una anastomosis
complicada de segmentos mitocondriales co-
mo bastoncitos que toman diferentes formas.
Al finalizar la espermiohistogénesis se observa

153

que el “nebenkern” llega a ser bipartita por
ruptura de los segmentos, para finalizar en
dos derivados mitocondriales (Fig. 7), los cua-
les se alargan enormemente a lo largo del axo-
nema. Una de las principales características en
relación a estos derivados es la presencia en su
interior de un material cristalizado probable-
mente de naturaleza proteica (cuerpos para-
cristalinos) (Fig. 12).

2.3. Núcleo

En la espermátida temprana el núcleo es de
gran tamaño y esférico, su cromatina es fina-
mente granular y se tiñe en forma moderada
(Figs. 3 y 4). Durante este estado se observa
además un engrosamiento de la envoltura nu-
clear, que abarca aproximadamente la quinta
parte de su superficie (Fig. 8). Con mayor
aumento se observa que este engrosamiento
no es continuo (Fig. 9).

A medida que transcurre la elongación es-
permática, la cromatina va formando masas
más densas embebidas en el nucleoplasma cla-
ro; en gran medida se encuentra asociada a la
envoltura nuclear (Fig. 4). En estados avanza-
dos el nucleoplasma tiende a desaparecer, la
cromatina constituye cordones abundantes y
tortuosos que en los cortes aparecen longitu-
dinales y/o transversales (Figs. 5 y 10).

El núcleo gradualmente conforma una es-
tructura elongada que en su tercio posterior
inserta la base del filamento axial (Fig. 5), per-
maneciendo estructuralmente bien asociado a
las mitocondrias y al centriolo proximal (Fig.
11). Cortes realizados a este nivel muestran la
presencia de microtúbulos en torno a la envol-
tura nuclear; esta vecindad de los microtúbu-
los al núcleo podría interpretarse como una
participación en los procesos de la morfogéne-
sis nuclear (Courtens, 1982). Además es posi-
ble observar en estos cortes dos escotaduras
laterales que, carentes de microtúbulos, alojan
a dos formaciones caracterizadas por mem-
branas electroopacas que limitan a un material
translúcido (Fig. 11).

2.4. Axonema

El filamento axial hace su aparición en una
escotadura lateral del núcleo de la espermáti-

154 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Fig. 2. Corte transversal por testículo. Cistos espermatogénicos.

pc = pared cística. 9400 X

Fig. 3. Espermátida temprana. Gránulo acrosómico (flecha)

20000 X

Fig. 4. Elongación inicial de la espermátida.

ff = fosa flagelar. 20000 X

Fig. 5. Corte longitudinal de la región cefálica del espermatozoide.
a = acrosoma; fl = flagelo. 33300 X

Fig. 6. Cuerpo mitocondrial (“nebenkern”) de espermátida temprana.

12000 X
Fig. 7. Derivados mitocondriales rodeando al axonema (ax).

27200 X.

155

156 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 157

Fig. 8. Engrosamiento de una parte de la envoltura nuclear (flechas).
12000 X. Ñ .

Fig. 9. Discontinuidad del engrosamiento de la envoltura nuclear.
20000 X.

Fig. 10. Corte transversal de la región cefálica del espermatozoide.
28000 X. (

Fig. 11. Tercio posterior de la cabeza de un espermatozoide.

cr = cromatina; mt = microtúbulos. 43000 X

Fig. 12. Corte transversal del flagelo. m = mitocondria; cp = cuerpo paracristalino; ax = axonema; mt = microtúbulos.
43000 X.

Fig. 13. Espermatozoide visto al microscopio de barrido (SEM).

c = cabeza. 160 X.

158

da temprana. Al mismo tiempo que se inicia la
elongación nuclear, queda de manifiesto una
gran fosa flagelar por invaginación de la en-
voltura nuclear (Fig. 4). Posteriormente, en
esta escotadura se inserta el flagelo ocupando
el último tercio de la cabeza del espermatozoi-
de. Cortes transversales en áreas más distales
muestran la configuración típica 9+2 de los
microtúbulos del axonema (Fig. 12). Una serie
de microtúbulos acompañan al flagelo en todo
su recorrido, disponiéndose irregularmente.

En cortes por zonas más distales de la pieza
media persiste la asociación entre axonema y
mitocondrias, estas últimas con los cuerpos
paracristalinos dirigidos hacia la superficie de
contacto de éstos y el flagelo (Fig. 12).

El término de la espermiohistogénesis defi-
ne la morfología del espermatozoide de la es-
pecie. En la Fig. 13 se observa un espermato-
zoide maduro fotografiado al SEM; en él se
distingue la cabeza, cuyo tamaño corresponde
aproximadamente a 1/9 del largo total del es-
permatozoide.

CONCLUSIONES

1. Es interesante destacar que, siendo Neta chi-
lensis (Walker) un díptero de la Familia Ca-
lliphoridae, su morfología testicular es si-
milar a la de Glossina palpalis (R-D) (Musci-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

dae) y también lo es con respecto a la de los
Pupipara (v. gr. Hippoboscidae y Brauli-
dae). Sin embargo, a diferencia de los dípte-
ros citados, los testículos de N. chilensis no
forman un ovillo compacto (Séguy, 1951;
Richards and Davies, 1977).

2. A la microscopía electrónica de transmisión
(TEM) es posible observar en el interior de
los túbulos seminíferos a los cistos, cuyas
células germinales se encuentran en un
mismo estado de diferenciación (Fig. 2).

3. Al igual que muchos insectos, en la esper-
mátida temprana de N. chilensis las mitocon-
drias forman el cuerpo mitocondrial o “ne-
benkern” (Fig. 6).

4. El flagelo emerge del tercio posterior de la
cabeza del espermatozoide (Fig. 5).

5. La organización microtubular del axonema
corresponde al patrón 9 + 2; exteriormen-
te grupos de microtúbulos acompañan al
flagelo (Fig. 11).

6. En el interior de las mitocondrias ubicadas
en el flagelo existen estructuras paracrista-
linas orientadas hacia la región vecina al
axonema (Fig. 12), descritos también en
otros invertebrados.

7. En la envoltura nuclear se advierte un en-
grosamiento localizado, lo cual sugiere que
tempranamente se establezca una polari-
dad en la diferenciación de la espermátida
(Fig. 9).

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gaster: The effect of abnormal cytoplasmic microtubu-
les population in mutant ms (3) IOR and its colcemid-
induced phenocopy. J. Ultrastruct. Res. 48: 242-258.

a)
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Sp
dc ¡a bel A

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 161-162, 1985.

DETECCION DE LA “POLILLA DEL BROTE” EN CHILE:
RHYACIONIA BUOLIANA (SCHIFFERMULLER, 1776)
(LEPIDOPTERA: TORTRICIDAE)

Detection of the “Pine shoot moth” in Chile:
Rhyacionia buoliana (Schiffermuller, 1776) (Lepidoptera: Tortricidae)

LUIS A. CERDA*, CARMEN JANA-SAENZ** y MARCOS A. BEECHE*

ABSTRACT

The presence in Chile of the pine shoot moth, Rhyacionia
buoliana (Schiffermuller, 1776), (Lepidoptera:
Tortricidae) is reported. This moth probably caming
from Argentina, was found feeding on Pinus radiata and
P. contorta plantations; under attack are 9000 Hectares
between 41”28'S and 39"43'S; This damage was initially
detected in January 1985. Comments on its monovoltine
character in Southern Chile and on potential damage are
also included.

Keywords: Rhyacionia buoliana. Lepidoptera. Tortricidae.
Pinus spp. Forest damage. Detection. Geographical
distribution. Chile.

ANTECEDENTES Y ANALISIS

Rhyacionia buoliana (Schiff., 1776) (Lepidopte-
ra: Tortricidae), es un insecto originario de
Europa, el cual, por acción antropógena prin-
cipalmente, se encuentra ampliamente distri-
buido en el mundo.

Afecta a coníferas del género Pinus y el
daño que ocasiona este insecto durante su fase
larval, se traduce en la destrucción de los bro-

*Instituto de Silvicultura, Universidad Austral de Chile.
Casilla 853. Valdivia.

**Departamento de Zoología. Universidad de Concep-
ción. Casilla 2407. Concepción.

RESUMEN

Se señala la presencia de la polilla del brote, Rhyacionia
buoliana (Schiffermuller, 1776) (Lepidoptera: Tortrici-
dae) en Chile. Se supone que fue introducida al país desde
Argentina, fue encontrada alimentándose en plantacio-
nes de Pinus radiata y P. contorta. En estos momentos afecta
a 9.000 hectáreas de plantaciones ubicadas entre los
4128" y 3943" Latitud Sur. El daño fue detectado por
primera vez en enero de 1985. Se cree que en el Sur de
Chile se comporta como una especie monovoltina. Ade-
más se incluyen comentarios sobre la proyección de futu-
ros daños.

tes O yemas, provocando con esto una notoria
disminución del crecimiento en altura y una
posterior deformación fustal en los individuos
afectados.

La gravedad del daño se hace sentir princi-
palmente en árboles jóvenes en pleno período
de crecimiento, para los que se ven reducidas
sus posibilidades de utilización industrial a
causa de la deformación ocasionada por suce-
sivos ataques.

La detección de R. buoliana en Chile, en
enero de 1985, no reportada anteriormente
para el país, determinó la ejecución de una
prospección orientada a determinar su actual

162

área de distribución, así como la superficie de
plantaciones que manifestaban la presencia
del insecto y/o daño.

A través de la prospección realizada bajo la
coordinación de la Corporación Nacional Fo-
restal (CONAF), que abarcó 20.000 hectáreas
de plantaciones formadas casi en su totalidad
por Pinus radiata D. Don, se estableció que la
presencia del insecto se encuentra limitada a la
X Región, entre los paralelos 41928" y 39%43'
de latitud sur. Al mismo tiempo, se pudo de-
terminar que R. buoliana se encuentra afectan-
do, en diversos grados, un total de 9.000 hec-
táreas de plantaciones de diferentes edades
(CONAF, 1985).

En Argentina este insecto es conocido des-
de el año 1936 (Pastrana, 1946), razón por la
cual Eglitis en 1974 estimó que probablemen-
te éste sería el lugar de origen desde el cual R.
buoliana se introduciría en Chile. Esto se esta-
ría corroborando positivamente al detectarse
en el sector precordillerano de Ensenada
(Puerto Varas), cercano al paso fronterizo Vi-
cente Pérez Rosales, plantaciones de P. radiata
y P. contorta con ataque de hasta seis años de
antigúedad.

La identificación de R. buoliana efectuada
inicialmente a través de larvas y exuvias pupa-
les, fue ratificada sobre la base de preparacio-
nes de genitalias, realizadas a partir de adultos
obtenidos en laboratorio en septiembre de

950

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

_La eventual dispersión de R. buoliana a toda

el área de distribución de P. radiata (V a X

Región) y el desconocimiento del comporta-
miento biológico de este insecto en Chile, ha-
cen que las proyecciones que este daño puede
alcanzar en el país, sean enormes. Esto debido
a la existencia de poco más de 1.000.000 de
hectáreas de plantaciones de esta conífera, de
las cuales aproximadamente un 65% son me-
nores de 15 años; lo que le permitiría a R.
buoliana alcanzar altos niveles poblacionales y
por ende, de daño.

Las observaciones efectuadas sobre las dife-
rentes fases de desarrollo, tanto en terreno
como en laboratorio, permiten suponer que
R. buoliana presentará en la X Región un com-
portamiento monovoltino, es decir, una gene-
ración anual.

CONCLUSIONES

La situación planteada hace necesario el pron-
to inicio de estudios tendientes a conocer el
ciclo biológico de R. buoliana, así como su diná-
mica poblacional. También se debe iniciar la
búsqueda de métodos de evaluación de daños
que, sumados a los estudios biológicos, permi-
tan posteriormente proponer y desarrollar las
medidas de control más adecuadas, tendientes
a prevenir o al menos reducir el nivel de daños
que pudiese ocasionar este insecto.

BIBLIOGRAFIA

Corporación Nacional Forestal. 1985. Prospección siste-
mática de la polilla del brote (Rhyacionia buoliana
(Schiff.)) en plantaciones de Pinus radiata de la X Re-
gión. Ministerio de Agricultura, Corporación Nacio-
nal Forestal, X Región de Los Lagos. Departamento
Técnico, Programa de Control de Plagas y Enferme-
dades Forestales. 24 p. (mimeografiado).

Eglitis, A. 1974. Susceptibilidad de los pinos a la polilla del

brote Rhyacionia buoliana (Schiff) (Lepidoptera: Ole-
threutidae): Análisis agrometeorológico en Argentina
y Chile. Facultad de Ciencias Forestales. Universidad
de Chile. 71 p.

Pastrana, J.A. 146. La mariposita europea del brote del
pino Rhyacionia buoliana (Schiffermuller). Min. Agr.
Nac., Inst. San. Veg., 2(15): 1-11.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 163-179, 1985.

SINOPSIS DE LOS HIRUDINEOS DE CHILE (ANNELIDA)

A synopsis of the Chilean Hirudinea (Annelida)

RAUL A. RINGUELET*

RESUMEN

Este trabajo incluye la hirudofauna chilena hasta aquí
conocida, que comprende las familias Glossiphoniidae:
seis géneros y catorce especies; Piscicolidae: tres géneros y
cinco especies; Americobdellidae: un género y una espe-
cie; Semiscolecidae: un género y dos especies, y Mesobde-
llidae: dos géneros y dos especies.

Se entrega además la descripción de Branchellion gne-
stos sp. n. recolectada de Myliobatis chilensis y se da como
nueva para el país a Patagontobdella fraterna Ringuelet. Se
agrega igualmente, la redescripción de Helobdella luteo-
punctata y de Americobdella valdiviana, y se consideran co-
mo probables para la fauna chilena austral a Glossiphonia
mesembrina, Helobdella araucana, Helobdella hyalina y Mesob-
della notohylica.

Se concluye con una clave para identificar todos los
taxones incluidos.

INTRODUCCION

Las sanguijuelas chilenas, o sea la clase de
Anélidos HIRUDINEA Lamark, 1818, llama-

*El autor ya fallecido, dejó, el presente manuscrito en
manos del Profesor Nibaldo Bahamonde de la Universi-
dad de Chile, quien lo enviara a Hugo I. Moyano de la
Universidad de Concepción y editor del presente Boletín
bajo cuya responsabilidad se le publica.

El manuscrito sólo ha sido alterado en su forma, aña-
diéndosele además, un resumen y un summary para aco-
modarse al estilo del Boletín de la Sociedad de Biología de
Concepción.

SUMMARY

This study summarizes the hitherto known Hirudinean
fauna from Chile. This includes: the Glossiphoniidae with
six genera and fourteen species, the Piscicolidae with
three genera and five species, the Americobdellidae with
one genus and one species, the Semiscolecidae with one
genus and two species, and the Mesobdellidae with two
genera and two species. Á

Branchellion gnesios sp. mn. collected from Myliobatis
chilensis and Patagoniobdella fraterna Ringuelet are new to
the Chilean fauna. Helobdella luteopunctata and
Americobdella valdiviana are redescribed. The presence of
Glossiphonia mesembrina, Helobdella araucana, Helobdella
hyalina and Mesobdella notohylica in the southern Chilean
fauna is hypothesized. A key for all the taxa considered is
also included.

Keywords: Hirudinea. Systematics. Leeches. New taxa.
Neotropics. Chile.

dos “pirigúines”, no son demasiado conocidas.
En la literatura científica existen unas 35 refe-
rencias bibliográficas más o menos extensas
relativas a ellas. Por mi parte he tenido ocasión
de estudiar desde 1943 algunas colecciones
donde estos hirudineos están representados y
de coleccionar personalmente en Chile, así co-
mo publicar casi diez trabajos que conciernen
total o parcialmente a este país. Mi deseo de
hacer algo útil y al día para reconocer la Hiru-
dofauna chilena tuvieron palabras de aliento
del Dr. Juan Fernández y del profesor Nibal-

164

do Bahamonde de la Universidad de Chile.
Mucho les agradezco y, éste es el modesto
resultado. 4

El conocimiento de los pirigúines de la Re-
pública de Chile comienza con Claude Gay
(1836) en una carta a H. Ducrotay de Blainvi-
lle sobre las costumbres de ciertas sanguijue-
las. Después con la aparición de la Historia
Física y Política de Chile, la famosa obra de C.
Gay (1849), Emile Blanchard en la parte zoo-
lógica se ocupa de los Anélidos. Los siguientes
naturalistas han mencionado o estudiado san-
guijuelas capturadas en territorio chileno y
publicado uno o más trabajos: Philippi (1867,
1872), Baird (1869), Grube (1871), Blanchard
(1892, 1893a, 1893b, 1893c, 1900, 1917),
Moore (1910, 1924, 1931), Porter (1912), We-
ber (1915), Pinto (1923), Johansson (1924),
Cordero (1941), Ringuelet (1943, 1944, 1955,
1972a, 1972b, 1976, 1978a, 1978b), Llewellyn
(1966), Richardson (1971) y Szidat (1972).

En esta contribución describo Branchellion
gnestos sp. n. eindico material original de Pata-
goniobdella fraterna Ringuelet, que constituye
una nueva cita.

Hasta ahora el elenco de la hirudofauna
chilena comprende las familias Glossiphonii-
dae (seis géneros y catorce especies), Piscicoli-
dae (tres géneros y cinco especies), Americob-
dellidae (un género y una especie), Semiscole-
cidae (un género y dos especies) y Mesobdelli-
dae (dos géneros con dos especies). Podrían
encontrarse algunas especies más, que por el
momento, se conocen de la región hirudinoló-
gica austral. Tal puede ser el caso de Glossipho-
nia mesembrina, Helobdella araucana, H. hyalina
y Mesobdella notohylica, especies que he descrito
de lagos patagónicos de desagúe al Pacífico o
de ambientes cercanos a la frontera chileno-
argentina.

Orden GLOSSIPHONIIFORMES Caballero,
1952:

Familia Glossiphoniidae Vaillant, 1890.

Género Adaetobdella Ringuelet, 1978

Adaetobdella Ringuelet, 1978, Limnobios

1(7): 269-270.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Especie tipo: Adaetobdella cryptica Ringuelet,

1978
Género similar a Helobdella por sus caracteres
externos. Posee una faringe muy larga, hasta
el nivel de los somitos XIM/XIV o XIV, y
glándulas salivales compactas. Género exclusi-
vo de Chile y Argentina, con tres especies co-
nocidas.

1. Adaetobdella cryptica Ringuelet, 1978.

A. cryptica Ringuelet, 1978, Limnobios 1(7):
20203:

Los ejemplares primigenios, recogidos por el
Dr. Guillermo Mann en cuatro localidades de
Tarapacá, de enero a marzo de 1948, fueron
confundidos con A. simplex (Moore, 1911). Re-
cientemente se la ha encontrado en abundan-
cia en la región alto andina de la provincia
argentina de Jujuy.

Especie de pequeño tamaño y cuerpo an-
gosto, sin tubérculos y boca en la concavidad
de la cápula. Color uniforme, gris a negruzco.

Distribución geográfica. CHILE: Tarapacá,
Miñemiñe, Volcán Tacora; cercanías del lago
Cotacotani (Ringuelet, 1978). ARGENTINA:
Región andina de Jujuy.

Género Batracobdella Viguier, 1879
Batracobdella Viguier, 1879, C.R. Acad. Sci.,
Paris 89: 110-112.

Especie tipo: Glossiphonia algira Moquin-
Tandon, 1846.

En América del Sur existen sólo dos espe-
cies, ambas presentes en Chile.
2. Batrachobdella dubia Ringuelet, 1958

B. dubía Ringuelet, 1958, Acta Zoológica Li-
lloana, 15: 121-126, figs. 1-6.

Distribución geográfica. CHILE: Antofagas-
ta, Conchi (Museo de La Plata VII1-1953, leg.

-W. Hermosilla, 5 ejemplares). ARGENTINA:

Santa Cruz, Lago Argentino.

-3. Batrachobdella gemmata (Blanchard, 1900)

Helobdella gemmata Blanchard, 1900, Ergebn.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Hamburger Magalh. Sammelr. 1892-1893,
3(3): 11-12, fig. IV, a-b, pl., fig. 1-2.

Distribución geográfica. CHILE: Valdivia,
Putabla (Blanchard, 1900). ARGENTINA:
Provincias de Corrientes, Córdoba y Buenos
Aires. URUGUAY: Departamento de Monte-
video.

Género Glotobdella Ringuelet, 1978.

Gloiobdella Ringuelet, 1978, Limnobios 1(7):
274.

Especie tipo: Helobdella michaelseni Blanchard,
1900.

Este género se distingue por la falta total de
ciegos “gástricos” en el buche y la existencia de
siete pares de testículos. Por lo demás, tiene los
caracteres comunes de Helobdella Bl.

4. Gloiobdella michaelseni (Blanchard, 1900)

Helobdella michaelseni Bl. 1900, Ergebn. Ham-
burger Magalh. Sammelr. 1892-1893, 3(3):
12-13, figs. V, VI.

Distribución geográfica. CHILE: Estancilla,
río Valdivia; Magallanes, Punta Arenas (Blan-
chard, 1900). Santiago, Peñaflor (Depto. de
Ciencias Biológicas, Universidad de Chile, co-
lección de comparación). ARGENTINA: Pro-

vincias de Misiones, Corrientes, Jujuy, Salta, .

Tucumán, Catamarca, Entre Ríos, Santa Fe,
Córdoba, San Luis, Buenos Aires, Mendoza,
Río Negro, Neuquén, Chubut, Tierra del Fue-
go. BRASIL: Estado de Sáo Paulo. PARA-
GUAY: Departamento de Guaira. PERU: De-
partamentos de La Libertad y Puno. URU-
GUAY: Departamentos de Montevideo, Ca-
nelones y Minas.

Género Haementeria de Filippi, 1849

Haementería de Filippi, 1849, Mem. Real.
Acad. Science di Torino. (2) 10: 401.
Especie tipo: Haementería Ghiliana de Filippi,
1849.

Género típico de la región hirudinológica
“Brasílica”; se encuentra también en Chile en
distribución disyunta. Existen unas ocho espe-

165

cies sudamericanas. Una diagnosis completa
puede verse en Ringuelet (1980, Limnobios

E

5. Haementería depressa (E. Blanchard, 1849)

Blenobdella depressa E. Blanchard, 1849, in Gay
C., Hist. Fis. y Polit. de Chile, Zool., 3: 49;
Atlas, pl. 2, fig. 5.

Haementeria bonariensis Cordero, 1937, A.
Mus. Arg. Cs. Nat. “B. Rivadavia”, 39: 31-36.

Haementeria gracilis Cordero, 1941, Bol.
Acad. Nac. Ciencias, Córdoba 35: 200-203,
figs. 1 a-b.

Haementerta depressa Ringuelet, 1972, Physis
31(82): 98.

Distribución geográfica. CHILE: Santiago,
Peñaflor (Museo de La Plata, X-1979, colector
Dr. Juan Fernández y R.A. Ringuelet, 10
ejemplares); cerca de El Monte, continuación
del río Maipo (ejemplares de la Cátedra de
Invertebrados, Departamento de Ciencias
Biológicas, Universidad de Chile); Valdivia,
Toltén (Cordero 194.1, un ejemplar, Museo de
Historia Natural de Montevideo). Sin locali-
dad (holotipo, Musée d'Histoire Naturelle de
Paris). ARGENTINA: Provincias de Misiones,
Corrientes, Jujuy, Tucumán, La Rioja, San
Luis, Santiago del Estero, Córdoba, Entre
Ríos, Santa Fe, Buenos Aires, La Pampa, Río
Negro. BRASIL: Estados de Ceará y Río
Grande do Sul. PARAGUAY: Departamentos
de Central y Guaira. URUGUAY: Departa-
mentos de Montevideo, Colonia, Carielones,
Paysandú y Artigas.

Género Helobdella Blanchard 1896

Helobdella Blanchard, 1896, Bol. Mus. Torino
11(263): 4.

Especie tipo: Hirudo stagnalis Linnaeus, 1758.

Es el taxon con más especies de todos los
hirudíneos, con unas treinta, en su mayoría de
América del Sur. Unas pocas se encuentran en
la región Neártica, una en la Paleártica y una o
dos en Africa. Tenía un marcado carácter po-
limíxico, pero se ha delimitado recientemente
(Ringuelet, 1978).

166

6. Helobdella chilensis Blanchard, 1900

HA. chilensis Blanchard, 1900, Ergebn. Ham-
burger Magalh. Sammelr. 1892-1893, 3(3):
14-16, figs. VII a, b; IX a, b.

H. chilensis: Weber, 1915, Monographie des
Hirudinés Sud-Américaines, 34-35, lám. I,
figs. 7a-b.

H. chilensis: Ringuelet, Physis 31(82): 100.

La descripción original de Blanchard men-
ciona anillos simples y sin tubérculos, un lóbu-
lo cefálico de cinco anillos, boca ventral y go-
noporos separados por dos anillos. Weber
agrega que la faringe se recurva en la base y
que posee ciegos gástricos, de los cuales el
último par tiene trayecto descendente.

A pesar de haber visto los tipos en el Museo
de París, los dos ejemplares están muy mal
conservados, y me fue imposible dilucidar sus
caracteres. Tengo algunos ejemplares del es-
tero Limache, Valparaíso, que si bien concuer-
dan con la descripción primigenia en casi to-
do, disienten por tener los orificios sexuales
separados por un solo anillo. Quizás Blan-
chard, como le ocurrió con H. triserialis, se
equivocó en el número de anillos entre ambos
orificios.

7. Helobdella duplicata duplicata (Moore, 1911)

Glossiphonia duplicata Moore, 1911, Reports of
the Princeton University Expedition to Pata-
gonia, 1896-1899, 3, Zool.: 675-680.

Helobdella duplicata: Ringuelet, 1972, Physis
31(83): 346.

Especie muy característica, de cuerpo ro-
busto, anillos subdivididos por un surco trans-
verso secundario, y provisto de visible placa
quitinosa dorsal, en la línea media de la región
pregenital. La subespecie típica, que es la pre-
sente en Chile, carece de tubérculos.

Distribución geográfica. CHILE: Coquimbo,
Río los Molles (Ringuelet, 1972); Santiago, Pe-
ñaflor (Museo de La Plata, X-1979, col. Dr.
Juan Fernández y Raúl A. Ringuelet, 10 ejem-
plares). ARGENTINA: Provincias de Jujuy,
Catamarca, Salta, Córdoba, San Luis, Santa
Fe, Buenos Aires, Río Negro, Chubut, Santa

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Cruz, Tierra del Fuego. BOLIVIA: Cocha-
bamba. BRASIL: Río Grande do Sul. PERU:
Departamento de Puno. URUGUAY: Depar-
tamentos de Montevideo, Colonia, Canelones,

Maldonado.

8. Helobdella luteomaculata Weber, 1915.

H. luteomaculata Weber, 1915, Monogr. Hi-
rud. Sud-Amér.: 32-37, lám. I, figs. 8a-b.

Desde su descripción original, esta especie
—<casi dudosa— no había sido vuelta a ver. Un
ejemplar de Peñaflor, que colectara el Dr. W.
Hermosilla, pertenece a esta entidad, la cual
tiene una gran similitud con A. triseralas
(Blanchard).

Longitud total 18 mm; ancho máximo 3,7
mm; longitud hasta gonoporo masculino 9
mm, longitud cotilo 2,8 mm; ancho cotilo 1,9
mm. Dos ojos redondos en IV (al a2), boca en
el labio anterior capular, I1/I111. Ano post.
XXVII. Somitos 1 y II unidos en el primer
anillo, HI 1-anillado, IV y V 2-anillados, VI a
XXIV completos, o sea, 3-anillados, XXV 2-
anillados XXVI y XXVII 1-anillados. Gono-
poros separados por el anillo XIla2, masculi-
no en XIlal/a2, y femenino en XIla2/a3. Tres
filas dorsales de papilas oscuras con el ápice
negro en los anillos neurales a2, una mediana
y dos laterales. Areas sensiliferas blancas, en
a2, las del dorso levemente salientes: parame-
dianas, intermedias y supramarginales. Las
márgenes del cuerpo son blancas. Vientre con
máculas negras desparramadas y dos líneas
negras paramedianas longitudinales. En el
dorso, una banda o faja mediana, entre las
sensilas paramedianas; una línea gruesa para-
mediana interrumpida en cada área sensilífe-
ra; una línea y una faja entre las sensilas para-
medianas y las sensilas laterales, y tres fajas
que a veces se tocan entre las sensilas laterales
y las supramarginales. De la región genital a la
cefálica, fajas y líneas confluyen y dejan más
visible el color amarillo claro o crema del
fondo.

Distribución geográfica. CHILE: Santiago,
Peñaflor (Museo de La Plata, col. W. Hermosi-
lla, un ejemplar).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

9. Helobdella scutifera Blanchard, 1900

H. scutifera Blanchard, 1900. Ergebn. Ham-
burger Magalh. Sammelr. 1892-1893, 3(3): 9-
11, figs. Ma-b; lám. figs. 6-7.

H. scutifera: Weber, 1915, Monogr. Hirud.
Sud-Amér.: 30-31, figs. 4a-b.

H. scutifera: Ringuelet, 1972, Physis 31(82):
100-101.

No tiene los caracteres que le atribuyen
Blanchard y Weber, pues el examen del mate-
rial típico, en el Museo de Historia Natural de
París, revela que no existe una placa dorsal,
sino una glándula nucal, naturalmente sin pla-
ca, y los anillos están divididos por un surco
transversal secundario. Es una especie robusta
como HA. duplicata, de color obscuro, con man-
chas negras irregulares y próximas; en algu-
nos ejemplares esas máculas confluyen casi
totalmente.

Distribución geográfica. CHILE: Magallanes,
Susana Cove (Weber, 1915); Puerto Bridges
(Blanchard, 1900); Punta Arenas (Blanchard,
1900, Weber, 1915). Llanquihue, Puerto
Montt (Blanchard, 1900, Weber, 1915). Valdi-
via, Llifén (Museo de La Plata, 11-1976, col.
R.A. Ringuelet, 20 ejemplares). ARGENTI-
NA: Río Negro, Neuquén.

10. Helobdella similis Ringuelet, 1942.

H. similis Ringuelet, 1942, Not. Mus. La Plata,
7 Zool. (59): 221.

H. similis: Ringuelet, 1943, Physis 19:374-
376, fig. 3.

Distribución geográfica. CHILE: Tarapacá,
Miñemiñe (Museo de La Plata, col G. Mann F.,
un ejemplar). Valdivia, alrededores de Quin-
chilca (Ringuelet, 1943). ARGENTINA: Pro-
vincias de Córdoba, Tucumán, Neuquén, Río
Negro.

11. Helobdella stagnaliss (Linnaeus, 1758)

Hirudo stagnalis Linnaeus, 1758, Syst. Nat. X
Ed.

Helobdella stagnalis: Blanchard, 1900, Er-
gebn. Hamburger Magalh. Sammelr., 3(3): 8.

Distribución geográfica. CHILE: Valdivia,

167

Valdivia (Blanchard, 1900). Regiones Neotro-
pical, Neártica, Paleártica.

12. Helobdella triserialis triserialas (E. Blanchard,
1849)

Glossiphonia triserialis E. Blanchard, 1849, in

Gay, C. Hist. Fís. y Polít. de Chile, Zool., 3: 50.
Helobdella traserialis: Weber, 1915, Monogr.

Hirud. Sud-Amér.: 27-29, lám. VI, fig. 49.

Distribución geográfica. CHILE: Concepción,
Concepción (Weber, 1915); Carelmapu (E.
Blanchard, 1849); Santiago, Peñaflor (Museo
La Plata, X-1979, col. Juan Fernández y R.A.
Ringuelet, cinco ejemplares). ARGENTINA:
Provincias de Jujuy, Corrientes, Córdoba, En-
tre Ríos, Santa Fe, Buenos Aires, Río Negro,
Neuquén. BRASIL: Estados de Ceará, Parai-
ba, Florianápolis, Minas Gerais, Sáo Paulo.
COSTA RICA, GUATEMALA, GUAYANA
FRANCESA, PARAGUAY. PERU: Cuzco.
URUGUAY: Departamentos de Maldonado,
Treinta y Tres, Soriano y Rocha. VENEZUE-
LA: Estado Guárico.

Género Theromyzon Philippi, 1867

Theromyzon Philippi, 1867, Arch. Naturg. año
ILL: TO
Especie tipo: Theromyzon pallens Philippi,
1867.

Hirudo tessulata O.F. Múller, 1774.

13. Theromyzon propinquum Ringuelet, 1947.

T. propinguum Ringuelet, 1947, Nat. Mus. La
Plata, 12 Zool. (103): 217-221, fig. 1.

T. propinguum: Ringuelet, 1972, Physis
31(83): 348.

?2T. pallens Philippi, 1867, Arch. Naturg.,
año 37(1): 76-77, lám. 2, figs. Aa-c.

Externamente tiene la misma apariencia y
coloración de la especie paleártica T. tessula-
tum, tan común en Europa. Pero difiere por
sus gonoporos separados por tres anillos, en
vez de 4, y por supuesto por los rasgos endoso-
máticos, particularmente los del sistema geni-
tal. Todos los Theromyzon sudamericanos que
he visto: de tres localidades de Chile, de cinco
de Argentina y de dos del Perú, pertenecen a

168

esta especie. Si, como conjeturo, las referen-
cias sudamericanas corresponden a esta espe-
cie y no a T. tessulatum, ésta deberá llamarse T.
pallens Philippi.

Distribución geográfica. CHILE: Tarapacá,
Miñemiñe; lago Cotacotani cerca de Parinaco-
ta; salar de Charcote (Ringuelet, 1972). AR-
GENTINA: Provincias de Jujuy, Río Negro,
Neuquén, Buenos Aires, Santa Cruz. PERU:
Departamentos de Junín y Cuzco.

14. Theromyzon tessulatum (O.F. Múller, 1774)

Hirudo tessulata O.F. Múller, 1774, Vermium
Terrestr. et Fluviat., 1: 45-46.

>Theromyzon pallens Philippi, 1867, Arch.
Naturg. año 37, 1: 76-77, lám. 2, figs. Aa-c.

?Glossiphonza tessellata Blanchard, 1892, Ac-
tes de la Societé Scientifique du Chili, 3: XXV-
XXVIII.

?Glossiphonia tessellata: Blanchard, 1892,
Actes Soc. Scient. Chili, 2: 177-187, fig. 2.

?>Hemiclepsis tesselata Moore, 1911, Rep.
Princeton Univ. Exped. Patagonia 1896-1899,
3: 686-687.

>Protoclepsis tessellata Weber, 1915, Monogr.
Hirud. Sud-Amér.: 77-78, lám. IV, figs. 29-
30.

Pienso que esta sanguijuela no existe en
América meridional y que los autores a partir
de R. Blanchard (1892a, 1892b), Moore
(1911), Weber (1915) y Oka (1932) han atri-
buido los ejemplares que vieron a esa especie
holártica, por tener la misma apariencia que
T. propinquum Ringuelet, descrita muchos
años después.

Distribución geográfica. CHILE: Maule, La-
guna Cauquenes (Blanchard, 1892); Valdivia,
Frutillar (Weber, 1915); Llanquihue, Puerto
Montt (Weber, 1915). ARGENTINA: Provin-
cia de Chubut (Moore, 1911). PERU: (Oka,
1932). Regiones Neártica y Paleártica.

Familia Piscicolidae (Johnston, 1865)
Género Branchellion Savigny, 1822

Branchellion Savigny, 1822, Syst. des Annéli-
des: 109.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Especie tipo: Branchellion torpedinis Savigny,
1822.

15. Branchellion lobata Moore, 1952

B. lobata Moore, 1952, Occas. Pap. Bishop
Mus. Honolulu, 21: 36-43, figs. 1, 7b, 8, 9.

B. lobata: Szidat, 1972, Studies on the Neo-
tropical Fauna, 7: 189-190, figs. A, B.

De este Piscicolidae, no hemos visto ejem-
plares chilenos, pero sí de Monterrey, Califor-
nia. (Museo de Historia Natural de Monte-
video).

Distribución geográfica. CHILE: Valparaíso,
Montemar sobre Callorhynchus callorhynchus.
U.S.A.: California.

16. Branchellion callorhynchus Szidat, 1972

B. callorhynchus Szidat, 1972, Studies on the
Neotropical Fauna 7: 190-191, figs. C, D.
La descripción original se hizo sobre un
solo individuo capturado en Montemar, Val-
paraíso, sobre un “pez gallo”, “gallo” o “pez
elefante”, sobre el que también se capturó un
ejemplar de Branchellion lobata Moore. Tiene
aparentemente poquísimas diferencias con la
especie antes citada, que consistirían solamen-
te en la presencia de cuatro bandas transversa-
les de color sobre los anillos 1, 3, 6 y 8 del
traquelosoma. Szidat dice que las vesículas son
diez u once pares; justamente las del primer
par son inaparentes en B. lobata. Moore men-
ciona unas 1.300 cúpulas en la faz ventral de la
ventosa posterior, y Szidat más de 1000 para
su nueva especie (“Auf ihrer Innenseite liegen
weit úber Tausend winzige Saugnápfchen”).

17. Branchellion gnesios Sp. n.

Caracteres diferenciales: especie de Branche-
llion de tamaño mediano, hasta de unos 35
mm de longitud total, con traquelosoma y uro-
soma bien diferenciados y un collar o prepu-
cio urosómico que cubre enteramente la re-
gión clitelar; diámetro transversal del cotilo
dos veces el del urosoma. Treinta y tres pares
de branquias foliáceas desde XIII a3 a XXIII
a3; once pares de vesículas desde XIII a2 has-
ta XXIII a2, las del primer evidentes. Un par
de ojos formados por gránulos pigmentarios
agregados en forma de pi. No hay tubérculos

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

ni máculas metaméricas. Anillos del urosoma
subdivididos en el dorso por un surco secun-
dario transverso. Gonoporos separados por
dos anillos. Entre 430 y 500 cúpulas en la
ventosa posterior. El arco de los bulbos eyacu-
latorios llega a VIVIX.

Esta sanguijuela se compone de las siguien-
tes regiones o partes: cápula o ventosa ante-
rior, traquelosoma que comprende la región
pregenital, o preclitelar o cuello, y el clitelo,
urosoma con un collar o prepucio que oculta
la región clitelar, cotilo o ventosa posterior.
Cápula discoidea (diámetro transverso capu-
lar: ancho cuello = 1,41; respecto del ancho
máximo del urosoma = 0,60, y del diámetro
del cotilo = casi la tercera parte) formada por
un número indeterminado de anillos y con
dos ojos en forma de letra griega pi. Traquelo-
soma contenido 5,1 en la longitud total, divisi-
ble en cuello o región pregenital de 18 anillos y
clitelo de 6 anillos. El gonoporo masculino se
abre entre los anillos 18 y 19, su borde anterior
llega del orificio femenino, o sea a XII al/a2.
El urosoma tiene 32 anillos, subdivididos por
un surco transversal en el dorso (en todos los
ejemplares); en él se encuentran 11 pares de

169

vesículas marginales cada tres anillos, posible-
mente en los anillos a2 de los somitos XIII a
XXIITI, y 31 pares de base ancha desde XIII a3
a XXIITI a3. Existen seis anillos postbranquia-
les, con el ano entre el tercero y cuarto. Cotilo
grande cuyo diámetro transverso respecto del
ancho del urosoma es 1,41. En la faz ventral
tiene 430-500 cúpulas en filas radiales a partir
del centro. El arco de los bulbos eyaculatorios
llega hasta el ganglio IX.

Holotipo y cuatro paratipos depositados en
el Instituto de Limnologia (ILPLA) de Berisso
y La Plata, Argentina. Capturados sobre My-
hobatis chilensis, Punta Cuartel, Mejillones, An-
tofagasta, Chile, el 24-11-1980 por el Dr. Juan
Carvajal.

Género Platybdella Malm, 1836

Platybdella Malm, 1836, Góteborgs Kongl. Ve-
tensk. Vitt. Saml. Handl. 8: 217-218.
Especie tipo: [chthyobdella anarrhichae Diesing,
1859.

18. Platybdella chilensis Moore, 1910
P. chilensis Moore, 1910, Rev. Chilena, Hist.
Nat., 14 (1-3): 29-30.

Tabla 1
Dimensiones en mm del holotipo y tres paratipos
de Branchellion gnesios sp. n.

Medidas min. xl máx.
Cápula

diámetro longitudinal 2,24 2,46 2,80

diámetro transversal 2,24 2,36 2,40
Cuello

longitud 2,24 2,24 2,24

anchura 1,75 1,95 2,08
Clitelo

longitud 1,44 1,48 1,60

anchura 1,44 1,58 1,76
Urosoma

longitud 17,60 19,40 22,40

anchura sin branquias 3,20 3,60 4,00

anchura con branquias 4,80 5,20 5,76
Cotilo

diámetro longitudinal 6,40 6,80 7,20

diámetro transversal 6,40 6,84 7,92

170

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Tabla 11
Medidas en mm y proporciones de
seis ejemplares de P. chilensis

Medidas valores
Eongitud total
Traquelosoma + urosoma 7,45 8,25 SS 8,29 8,00 6,58
Cápula
longitud 0,42 0,52 0,49 0,52 0,52 0,47
anchura 0,68 0,84 0,81 0,81 0,76 0,68
Cuello
longitud 12 1,57 1,28 1,26 1,18 1,07
anchura máxima 0,57 0,70 0,70 0,65 0,65 0,52
espesor máximo 0,47 0,55 0,55 0,55 0,52 0,42
Clitelo
longitud 0,63 0,60 0,81 0,68 0,68 0,63
anchura 0,76 0,84 0,84 0,76 0,76 0,57
espesor 0,60 0,68 0,68 0,65 0,63 0,49
Urosoma
longitud 5,70 6,35 6,14 6,35 6,14 4,88
anchura 1,12 1,18 1,18 M2 1,31 0,86
espesor 0,91 1,31 1,02 0,94 0,97 0,81
Cotilo
diámetro 1,31 1,44 1,44 1,76 1,57 1,18
Proporciones valores
Cápula, ancho/cuello, ancho 1,10 1,20 1,10 20) 1,10 1,350
Cápula, ancho/urosoma, ancho 0,60 0,70 0,68 0,72 0,58 0,79

Fue descrita brevemente por Moore de
ejemplares enviados por el Dr. Carlos Porter,
capturados en un Porichthys porosus capturado
en la Bahía de Valparaíso. Hace más de 30
años el conocido profesor Francisco Riveros
Zúñiga me envió numerosos ejemplares colec-
cionados en Montemar (Valparaíso), sobre un
“bagre de mar”. Con ellos completo la descrip-
ción primigenia.

Es una sanguijuela de cuerpo cilindroide.
Cápula discoidal, algo más ancha que la región
pregenital o cuello, con dos pares de ojos, el
primero en el tercio posterior de la cápula
(probablemente IV) y el segundo par en el
comienzo del cuello, en V (al-a2). El somito
completo tiene tres anillos subdivididos, o sea
(b1+b2), (b3+b4) y (b5+b6). Esta subdivisión
se aprecia claramente en el dorso, pero es casi

inconspicua en la faz ventral, y la región pre-
genital comprende los segmentos V a X. Clite-
lo algo más grueso, de cinco anillos subdivi-
dos; los gonoporos que se abren en él, se en-
cuentran en XI (b1+b2)/(b3+b4) y en XII
(b3+b4)/(b5+b6). Esófago rodeado por glán-
dulas salivales; buche con un par de postciegos
en XIX soldados entre sí, dejando tres a cinco
espacios esferoidales o “lagunas”. Cinco pares
de testículos desde XIM/XIV a XVI/XVITI.
Los vasos deferentes descienden hasta el nivel
del segundo par de testículos engrosados en
ductos espermáticos y ascienden para unirse
mediante los cuernos atriales. El par de ova-
rios tubulares llega casi al tercer par de tes-
tículos.

Distribución geográfica. CHILE: Bahía de
Valparaíso, Montemar.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.
Género Stibarobdella Leigh-Sharpe, 1925

Stibarobdella Leigh-Sharpe, 1925, Parasitology
17-420.

Especie tipo: Pontobdella macrothela Schmarda,
1861.

19. Stibarobdella planodiscus (Baird, 1869)

Pontobdella planodiscus Baird, 1869, Proc. Zool.
Soc. London 1869: 312.

Pontobdella variegata Baird, 1869, Proc.
Zool. Soc. London 1869: 313.

Stibarobdella planodiscus: Llewellyn, 1966,
Bull. British Museum (Nat. Hist.), Zool. 14(7):
418-420, figs. 19-20 A-D.

Piscicolidae de gran tamaño, hasta unos
180 mm de longitud total, de color gris amari-
llento y relación diámetro cápula: diámetro
cotilo de 1:6. Sobre la ventosa anterior posee
cuatro pares de pequeñas papilas o “tentácu-
los”. La tuberculación, como en todas las espe-
cies, es muy evidente, y se compone de cuatro
tubérculos dorsales en el anillo medio a2 y
cinco ventrales, de los cuales uno es mediano.

Distribución geográfica. CHILE: Estrecho de
Magallanes, Bahía Posesión (Baird, 1869).
ARGENTINA y URUGUAY en el Atlántico
Sudoccidental.

Orden HIRUDINIFORMES Caballero, 1952

Debido a la importancia que tiene el “Liguay”
en la fauna chilena, a su enorme antigúedad
probable, y a su generalizado desconocimien-
to, he creído oportuno ofrecer la más comple-
ta descripción posible, incluyendo la diagnosis
de los taxa supraespecíficos (género y superfa-
milia). En esta síntesis se incluyen varias nove-
dades y confirmaciones.

Superfamilia AMERICOBDELLIDEA Rin-
guelet, 1971

Americobdellidea Ringuelet, 1971, Resumen
de Comunicaciones V Congr. Lat. Amer.
Zool. Montevideo: 36.

Americobdelloidea Ringuelet, 1976, Lim-
nobios 1(1): 12.

171

Hirudiniformes megalosomáticos de cuer-
po de sección ovalada, sin sensilas metaméri-
cas detectables; somito completo 5-anillado y
seis pares de ojos rudimentarios en un arco
regular sobre los somitos II a VI, de los cuales
los dos primeros pares de ojos se encuentran
en el mismo anillo que presenta el somito II.
En general el tubo digestivo es de tipo hemo-'
pisoide y carente de mandíbulas. Testículos en
gran parte dendríticos. Organos masculinos
impares representados por un atrio hemisfé-
rico O piriforme que desemboca al exterior
conjuntamente con una bursa femenina en el
orificio masculino o anterior. Este atrio recibe
de cada lado, en su cámara prostática dorsal
los ductos eyaculatorios, y su parte ventral es
un saco peniano musculoso, probablemente
eversible. Ovarios de tipo general erpobdeloi-
de, tubulares, que desembocan mediante sen-
dos oviductos en el gonoporo posterior o fe-
menino. Los oviductos se conectan, mediante
sendos “ductos de conexión” (equivalentes al
tejido vector de los Piscicólidos) con una
musculosa bursa femenina hemisférica, conti-
gua a la parte cefálica del atrio y que desembo-
ca con él al exterior en el gonoporo “masculi-
no” o anterior.

Familia Americobdellidae Caballero, 1956

Cardeidnae Ringuelet, 1944, Rev. Mus. La
Plata, N.S. 3 Zool. (22): 169-206.
Cardeidnae Ringuelet, 1944, Not. Mus. La
Plata 9 Zool. (74):
Cardeidnae Ringuelet, 1954, Not. Mus. La
Plata 17 Zool. (146): 7, 9.
Americobdellidae Caballero, 1956, An.
Inst. Biol., 27(1): 284-285.
Americobdellidae Ringuelet, 1976, Limno-
bios 1(1): 12-18.

Género Americobdella Caballero, 1956

Macrobdella Philippi, 1872, Zeitsch. f. Gesamt.
Natur. iss., N.F., 6: 43-44; nec Macrobdella Ve-
rrill, 1872.

Philippia Apathy, 1905, in schedula, nec
Gray, 1844, nec Signoret, 1869.

Macrobdella Weber, 1915, Monogr. Hirud.
Sud-Amér.: 111-112.

172

Cardea Blanchard, 1917, Bull. Soc. Pathol.
Exot., 10: 646; nec Whitefield, 1885.

Cardea Moore, 1924, Proc. Acad. Nat. Sci.
Philadelphia 76: 29-30.

Cardea Moore, 1931, Arch. Soc. Biol. Mon-
tevideo, Supl. 5: 1220-1225.

Cardea Ringuelet, 1943, Rev. Mus. La Plata
(N.S.), 3 Zool. (22): 206.

Americobdella Caballero, 1956, An. Inst.
Biol., 27(1): 284.

Americobdella Soós, 1966, Acta Zool. Hung.,
12(1-2): 156.

Americobdella Ringuelet, 1976, Limnobios 1
(1): 12:

Especie tipo: Macrobdella valdiviana Philippi,
1872.

Cada anillo tiene de 14 a 16 órganos sensiti-
vos diminutos como áreas circulares blancas.
Somitos completos: VIII a XXIV = 17. Gono-
poros en XI b5/b6 y en XII b5 cerca de b5/b6.
Diecisiete pares de nefroporos separados por
una distancia equivalente a un medio del an-
cho del cuerpo. Faringe con tres pliegues lon-
gitudinales más destacados, un dorso media-
no y dos ventrolaterales, y dos pliegues menos
desarrollados en los espacios que dejan los
primeros. Buche de XIV a XIX, con cinco
fuerte esfínteres; anteriormente a cada uno
de ellos hay un par de ciegos pequeños y pos-
teriormente un par de ciegos aun más peque-
ños; en XIX dos largos ciegos tubulares des-
cienden hasta XXIV. Nueve pares de testícu-
los, casi todos dendríticos. El vaso deferente es
recto y carece de trayecto descendente. Epidí-
dimos en XII; cortos ductos eyaculatorios sin
bulbo que desembocan en el atrio masculino.
Ovarios en XIII, tubulares, con largos oviduc-
tos. Un ducto de “conexión” une cada oviduc-
to con la bursa femenina hemisférica, la cual
adosada al atrio, desemboca con él en el orifi-
cio anterior o masculino.

20. Americobdella valdiviana (Philippi, 1872)

Macrobdella valdiviana Philippi, 1872, Zeitschr.
f.d. ges. Naturwiss., 40: 439-442, lám. 3, figs.
1-3.

Macrobdella gigas Philippi, 1872, Ibid. lám. 3.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Macrobdella valdiviana: R. Blanchard, in De-
chambre et Lareboullet, Dict. Encycl. Sc. Mé-
dic., (4 ser.) 14: 159.

Macrobdella valdiviana: Vaillant, 1890, in
Suit. a Buffon, 3, Annel.: 508.

M. valdiviana: Perrier, 1897, Traité de
Zool., 2-4: 1758.

Philippia valdiviana Apathy in schedula, in
Weber, 1915: 111.

Philippia valdiviana: Weber, 1915, Monogr.
Hirud. Sud-Amér.: 112-113.

Cardea valdiviana: R. Blanchard, 1917, Bull.
Soc. Pathol. Exot., 10: 646.

Cardea valdiviana: Pinto, 1923, Rev. Mus.
Paul., 13: 1079-1080, 1 fotogr.

Cardea valdiviana: Moore, 1924, Proc.
Acad. Nat. Sci. Philad. 1924: 29-48, lám. 3,
figs. 1-9.

Cardea valdiviana: Moore, 1931, Arch. Soc.
Biol. Montevideo, Supl. Act. Congr. Internac.
Biol. Montev., fasc. 5, Parasitol. y Hematol., :
1220-1225.

Cardea valdiviana: Ringuelet, 1944, Rev.
Mus. La Plata (N. S.), 3, Zool. (22): 206-207.

Americobdella valdivana: Soós, 1966, Acta
Zool. Hung., 12(1-2): 156-157.

Americobdella valdiviana: Ringuelet, 1976,
Limnobios 1(1): 12.

Las medidas de un individuo de 184 mm de
largo son: longitud hasta el gonoporo masculi-
no 34, ancho máximo 15, ancho en gonoporo
masculino 12, ancho en ano 8, longitud cápula
5, ancho cápula 6, diámetro cotilo 6,5.

Un ejemplar del Museo de La Plata tiene
206 mm de longitud, 14 de ancho máximo,
10,5 de espesor (al nivel del ancho máximo) y
un cotilo cuyo diámetro es 5,5. El ejemplar
mayor de la Cátedra de Invertebrados de la
Universidad de Chile, mide 270 mm de longi-
tud total según mi comprobación personal
(octubre de 1979).

Es una sanguijuela grande o “megalosómi-
ca” de cuerpo espeso, compacto de márgenes
casi paralelos, y salvo en los extremos, poco
deprimido. La región genital y pregenital son
firmes y resistentes por el espesor de las capas
musculares, y se angostan gradualmente hacia
la cápula o extremo anterior.

Cada anillo neural tiene dieciséis Órganos
sensitivos en la faz dorsal, como puntos blan-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

cos, ligeramente mayores que los que están
sobre otros anillos.

Labio anterior prominente y redondeado,
cubierto de pequeñas papilas blancas. Boca
amplia. Cápula formada por los somitos I a V;
el labio posterior está compuesto por los ani-

llos IV (a3) y V (al a2) soldados.

Gonoporo masculino en XI b5/b6 y femeni-
no en XII b5 cerca del surco XII b5/b6.

Nefroporos, 17 pares, cada orificio cerca
del surco posterior de los anillos b2 y separa-
dos entre los de cada par por una distancia
igual a un medio del ancho del cuerpo en el
mismo nivel.

Cotilo pequeño; el diámetro equivale a po-
co menos de un medio del ancho máximo;
diámetro cotilo 2,3-2,5. La superficie dorsal
tiene diminutas papilas blancas como las de los
anillos.

Seis pares de ojos en regresión, los pares 1 y
9 en II, el tercero en II, el cuarto en IV (al a2),
el quinto y sexto respectivamente en V (al a2)
y VI a2. Los últimos metámeros tienen, según
mi interpretación que difiere de la de J.P.
Moore, la composición siguiente: XXIV cinco
anillos; XX V cuatro y de ellos XXV (b5 + b6)
está subdividido; XXVI es trianillado (b1 +
b2) —a2— (b5 b6); XXVII es unianillado. El
ano está entre XXV y XXVI.

Boca amplia con un labio anterior ancho,
capaz de doblarse y retraerse, sin surco ventral
mediano. Labio posterior y techo bucal algo
rugoso y crenulado. La cámara oral llega a VI,
limitada por un pliegue anular. Faringe an-
cha, maciza y fusiforme, de Vl a XII, de pared
gruesa y con espesa capa de músculos longitu-
dinales y fibras musculares radiales y diver-
gentes en todas las direcciones a la pared del
cuerpo. Tres crestas longitudinales flanquea-
das por dos más pequeñas, o sea nueve en total
se observan en la capa mucosa faringea del
tercio anterior, pero desaparecen en el resto.
Un potente esfínter separa la faringe del bu-
che. Este se extiende desde el ganglio XIII a
XIX, como tubo angosto, de diámetro casi uni-
forme, pero con cinco esfínteres intersegmen-
tales. Exactamente delante de cada septo, exis-
te un par de ciegos pequeños y posteriormen-
te a esos septos hay un par de ciegos similares
mucho menores. En el extremo caudal de

173

XIX, anterior al septo y a los testículos, un par
de largos ciegos tubulares que descienden ha-
cia el extremo posterior, XXIV. En XIX y XX
hay una región globular con gruesa capa de
músculos circulares; un esfínter separa esta
región de una cámara pequeña y de pared
delgada (opuesta al séptimo par de testículos)
la que lleva un par de ciegos anteriores blancos
parecidos a las glándulas calcíferas de los
Lummbrícidos. Luego, hasta el ganglio XXI,
un saco globoso de pared delgada y en XXII
una sección angosta terminada en una válvula
anular y un saco bilobado de color oscuro;
prosigue una región de paredes finas con cu-
bierta mucosa irregularmente plegada, sin
constricciones hasta XXIV, y una última en
recto de cubierta mucosa simple.

Nueve pares de testículos en la región post-
ganglionar de los segmentos XIIT'a XXI, los
tres primeros pares menores y de forma elip-
soide; los testículos restantes, de tres milíme-
tros de diámetro, tienen forma lobulada irre-
gular. El ducto eferente, corto, se une con el
vaso deferente longitudinal de ambos lados,
que comienza con un saco ciego en XXIII,
blanco, liso, grueso y recto. Llega al nivel del
gonoporo o donde reduce su diámetro, se ha-
ce tortuoso y sigue en una masa amarillenta
formada por el tubo contorneado del epidídi-
mo. Este se dirige a la línea media y atrás,
como un arco, en XI, y sigue en un corto ducto
eyaculatorio recto (no contorneado) y pasa a lo
largo de la cara dorsal del atrio para unirse al
extremo apical del cuerno atrial chato. Este
cuerno está apretado contra el atrio, y en su
pared que es la región prostática, al aumentar
su diámetro. El atrio es un órgano firme y
muscular, casi hemisférico en vista superior O
corto y piriforme si se mira de lado, con la cara
cefálica chata en contacto con un saco de for-
ma similar que corresponde a los órganos fe-
meninos. Ambos conforman un conjunto elíp-
tico un cuarto más largo que ancho, cubierto
por una túnica muscular común y estrecha-
mente pegados. Atrio pálido, casi incoloro,
salvo un par de manchas púrpura por donde
entran los cuernos atriales. En este atrio se
pueden diferenciar dos porciones, una cáma-
ra dorsal o prostática formada por la unión de
los dos cuernos atriales, de gruesa cubierta

174

glandular y capa muscular, y una bursa ven-
tral o saco peniano, de paredes muy gruesas y
cubierta epitelial interna plegada. Esta por-
ción ventral es quizás eversible y podría for-
mar un pene corto y cónico.

Un par de ovarios, como sacos alargados,
en XIII, que se continúan en un ducto muy
plegado, firme y blanco, encurvado hacia arri-
ba y en el mesion. Los extremos llegan al pri-
mer par de testículos. Cada uno se continúa en
un ducto blanco y firme, muy plegado, debajo
de la faringe que se dobla finalmente hacia la
línea media penetrando en los músculos ven-
trales, uniéndose en el gonoporo femenino
debajo de la cuerda nerviosa. No existe vagl-
na. Antes de penetrar en los músculos ventra-
les cada oviducto desprende un “ducto de co-
nexión”, fino, blando, de color blanco, que
primero tiene dirección lateral y luego ante-
rior, en un recorrido ligeramente tortuoso, y
con un diámetro mayor en su trayecto media-
no. Cada uno desemboca en el extremo póste-
ro lateral de la bursa femenina. En tamaño y
forma esta bursa es casi un duplicado inverso
del atrio. Las paredes contiguas de ambos es-
tán como pegadas y achatadas, y tienen una
abertura común al exterior. La bursa femeni-
na es un saco simple, y aunque sus paredes
epitelial y muscular son gruesas, el gran tama-
ño de su cavidad indivisa hace aparecer a sus
paredes como blandas. El interior tiene un
pliegue mediano dorso ventral sobre la pared
cefálica y un engrosamiento en la pared ven-
tral.

Weber indica el color de un ejemplar de
Corral como gris sucio negruzco, en la faz
dorsal, y gris amarillento uniforme en la ven-
tral. Moore (1924) de acuerdo a una carta del
profesor Montealegre Randolph, dice que el
ejemplar acuático difiere por su color que es
azul pizarra y lleva solamente una banda roja
sobre el dorso. Los ejemplares que he visto,
con poco tiempo en líquido formolado, son
también azul pizarra o azul grisáceo, y algunos
conservaban una banda marginal ocrácea.

Datos etoecológicos: siempre se ha tenido al
“liguay” (tal es el nombre regional) como un
animal terrestre o terrícola. Pero Philippi, al
referirse a los cuatro ejemplares que tuvo para
la descripción primigenia, dice que fueron ob-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

tenidos en el agua, tres en “ditches of mill
races” y el cuarto en un arroyuelo. El Profesor
Montealegre, que le enviara dos ejemplares a

.J.P. Moore, se refiere (apud Moore, 1924) a

una forma acuática y a otra terrestre; una
viviría en ríos someros, la otra preferiría las
tierras altas y los bosques, encontrándose de-
bajo de troncos. Don Luis Peña, me ha dicho
en 1978, que en sus exploraciones ha encon-
trado dos cosas, una terrestre y otra palustre.
“El palustre es amarillo en su parte inferior y
mucho más plano que el terrestre”. “Es un
animal muy raro...”.

De acuerdo con Philippi, come oligoquetos
terrícolas. En un ejemplar que disecamos se
encontraron hidrofilídeos acuáticos.

Distribución geográfica. CHILE: Valdivia,
Corral (Weber, 1915); sin más precisión (Phi-
lippi, 1872, Moore, 1924); La Misión, Comu-
na de Valdivia (Museo de La Plata, 21-XII-
1970, col. Osvaldo Doering, un ejemplar);
Corral (Museo de La Plata, VI-1936, col. Hu-
go Gunkel, un ejemplar); Fundo Buenaventu-
ra, Huellelhue (Museo de La Plata, 17-VIII-
1973, col. Milton Gallardo y E. Clessing, cinco
ejemplares); Turbera en la Cordillera Pelada
(Museo de La Plata, col. W. Hermosilla, dos
ejemplares).

Superfamilia HIRUDINOIDEA Ringuelet,
953%

Familia Semiscolecidae (Sriban y Autrum,
1934) emend. Ringuelet, 1972.

Género Patagoniobdella Ringuelet, 1972

Patagoniobdella Ringuelet, 1972, Physis 31
(82): 197.

Especie tipo: Semiscolex variabilis Blanchard,
1900.

21. Patagontobdella fraterna Ringuelet, 1976

P. fraterna Ringuelet, 1976, Limnobios 1(3):
62-64, figs. 1-2.

Distribución geográfica. CHILE: Valdivia,
Llifén (Museo de La Plata, 11-1976, col. M.M.

Ringuelet, 16 ejemplares). ARGENTINA:
Provincias de Neuquén y Chubut.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

22. Patagoniobdella variabilas (Blanchard, 1900)

Semiscolex variabilas Blanchard, 1900, Ergebn.
Hamburger Magalh. Sammelr. 1892-1893,
3(3): 19-20, figs. XIII a-c, lám. L, figs. 1, 9, 12.
Semiscolex variabilis: Weber, 1915, Monogr.
Hirud. Sud-Amér.: 98-100, figs. 39 a-c.
Patagontobdella variabilis: Ringuelet, 1972,
Physis 31(82): 197.

Distribución geográfica. CHILE: Concepción,
laguna en Concepción (Weber, 1915). Valdi-
via, Estancilla (Blanchard, 1900); Frutillar
(Weber, 1915). Magallanes, Punta Arenas, 1s-
la Picton (Blanchard, 1900). ARGENTINA:
Provincias de Neuquén, Chubut, Santa Cruz,
Tierra del Fuego.

Familia Mesobdellidae Soós, 1972
Género Mesobdella Blanchard, 1893

Mesobdella Blanchard, 1893, Bull. Soc. Zool.
France 18: 29.

Especie tipo: Hirudo gemmata E. Blanchard,
1849.

23. Mesobdella gemmata (E. Blanchard, 1849)

Hirudo gemmata Blanchard, 1849, in Gay, Hist.
fís. y polít. Chile, Zool. 3: 48, Atlas, lám. II, fig.
4, 4.

Hirudo cylindrica Blanchard, 1849, Ibidem:
47, lám. IT, figs. 3, 3”.

Htrudo brevis Grube, 1871, Arch. Naturg.
año 37: 93-95, lám. III, fig. 4, 4a.

Mesobdella brevis: Blanchard, 1893, Bull.
Soc. Zool. France, 18: 26-29, fig. 1-4.

Mesobdella gemmata: Blanchard, 1900, Er-
gebn. Hamburger Magalh. Sammelr. 1892-
1893, 3(3): 17-18, figs. X, XI, XII a-d; lám.,
figs. 1-2.

Mesobdella gemmata: Weber, 1915, Monogr.
Hirud. Sud-Amér.: 88-93, lám. Iv, figs. 33, 34.

175

Mesobdella gemmata: Ringuelet, 1943, Physis
19: 363-373, figs. 1, 2.

Mesobdella gemmata: Richardson, 1971,
Proc. Linnean Soc. New South Wales, 95(3):
216-217, figs. 1 A-E.

Distribución geográfica. CHILE: Chiloé, El
Huito (Blanchard, 1893), Carelmapu (E.
Blanchard, 1849). Valdivia, sin más precisión
(Grube, 1871); Estancilla (Blanchard, 1900);
Corral (Weber, 1915, Richardson, 1971); cer-
ca del lago Puyehue (Ringuelet, 1943); Quin-
chilca sobre el río Calle Calle (Ringuelet,
1943); Llanquihue, Puerto Montt; Frutillar,
Desagúe (Weber, 1915).

Género Nesophilaemon Nybelin, 1943

Nesophilaemon Nybelin, 1943, Zool. Anz., 142:
249-250.

Especie tipo: Philaemon skottsberga Johansson,
1924.

Este género tiene grandes diferencias con
Mesobdella como para dudar de su inclusión en
la misma familia. Por el contrario, tiene afini-
dades con los Haemadipsoidea Richardson, y
quizás debería quedar en esta superfamilia, en
una entidad familiar propia.

24. Nesophilaemon skotisbergi (Johansson, 1924)

Philaemon skottsbergi Johansson, 1924, Natural
History of Juan Fernández and Easter Island,
3(48): 442-459, figs. 1, 2, lám. 14, figs. 1-9.

Philaemon skottsbergi: Ringuelet, 1955, In-
vestigaciones Zoológicas Chilenas, 2(9-10):
137-142, figs. 1-3.

Distribución geográfica. CHILE: Archipiéla-
go de Juan Fernández, isla de Más Afuera,
Inocentes Bajos e Inocentes Altos, en el inte-
rior de los bosques del helecho Dickinsoma ex-
terna, de 800 a 1300.

176

las

15%

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

CLAVE PARA LA IDENTIFICACION DE LOS HIRUDINEOS DE CHILE

La boca es un poro diminuto o pequeño que se abre en la concavidad de la cápula o
ventosa anterior, o bien en su labio anterior. La faringe, alojada en una vaina
perifaríngea, se puede proyectar hacia afuera por el plano bucal. El somito (=
metámero o segmento) está formado por tres anillos a veces subdivididos secun-
dariamente. Dos, cuatro a ocho ojos. Especies acuáticas libres o parásitas .....
IE AS AECE SIT o A GLOSSIPHONIIFORMES
La boca relativamente grande ocupa el fondo o parte posterior de la cápula.
Faringe fija, sin vaina. Somito completo de cinco anillos o en formas terrestres
formado por tres o cuatro anillos. Cinco o seis pares de ojos que forman un arco
cóncavo. Especies acuáticas o terrestres, macrófagas o hematófagas ..........
SLI OPERA II La HIRUDINIFORMES
Cuerpo cilindroide o deprimido, con branquias, diferenciado en regiones dife-
rentes; cápula discoidea y destacada del cuerpo. Con clitelo o región clitelar.
Petoparasitos de peces Man PISCICOLIDAE
Cuerpo deprimido, cuyo contorno es como una hoja o piriforme; cápula no
destacada del cuerpo y claramente ventral. No existen regiones diferenciadas ni
clitelo. Ninguna especie es ectoparásita de peces ....... GLOSSIPHONIIDAE
Con branquias laterales folfaceasió. e AS ade Branchelion Sav.
Sin branquias laterales e a EN
La superficie ventral del cotilo tiene más de 1000 “cúpulas” .......oooom.m....
La Superficie ventral del cotilo tiene alrededor de 500 “cúpulas” ............
o o Branchellion gnesios sp. n.

Cuatro bandas o anillos teñidos de negro sobre los anillos 1, 3, 6 y 8 del traqueloso-

A Branchellion callorhynchus Szidat spec. inquar.
Norexiste esarlibica ae a do O e OSA Branchellion lobata Moore
Strtuberelos a e debas aso ia loe E e Platybdella chilensis Moore

Todo el cuerpo cubierto de gruesos tUbErcalOs. a e es a AA

Master
Unico partdcrojos.Bdd Ra. o a yo ER

Dos pares letojosL ASILO SIOMS. es Batrachobdella gemmata (Blanchard)
Cuatrompares derojostar E Ad. BI. ON e al Theromyzon Philippi
Gonoporos separados por cuatro anillos....... Theromyzon tessulatum (Muller)
Gonoporos separados por tres anillos........ Theromyzon propinquum Ringuelet

Dorso de la región pregenital con una placa quitinoide coniforme o hemisféri-
a A AN NES RN O al da Ro il A A a lt
Dersorsinplaca quid E
Anillos simples sin división secundaria. Placa dorsal coniforme y oscura ......
O 0 ME e e al SAA LSO Helobdella stagnalis (Linnaeus)
Anillos divididos por un surco transverso secundario. Placa dorsal hemisférica de
color amarillo-castañO .................. Helobdella duplicata duplicata (Moore)
Anillos subdivididos por un surco transversal secundarlO ....oooccooccocoo...
Añilos'no subdivididos... ooo ye E o a A
Dorso con una glándula nucal en forma de hendija ovalada transversalmente.
Gonoporos separados por un anillo. Sin tubérculos.........0oooocccooooooo.-
a o il e a Helobdella scutifera Blanchard
Dorso sin glándula nucal. Gonoporos separados por dos anillos. Con tubérculos
te in est a dede ta 0 Haementeria depressa (Blanchard)

20

UD ÍA

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14

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104;

15.

16.

17.

18.

19.

20.

Ze

Pad

23,

Dorsofcon hileraside tuberculosa a
Dorsojssimituberculos Vantec. dea a a a als ben
Tres a cinco hileras de tubérculos: una mediana, dos intermedias, y a veces dos
supramarginales. No hay papilas paramedianas .......o.oooooooccccooccooo

RN A do Dal EI Helobdella triserialis triserialis (Blanchard)
Siete hileras de tubérculos: una mediana, dos paramedianas, dos intermedias y
dos supramarginales. 1. oo. O Helobdella luteopunctata Weber

Boca,en Ja concayidad de la cápula ut O al od Id
Boca en la base del labio anterior de la cápula ..........o.ooooooooooococ..o.o..
Buche o intestino medio con varios pares de ciegos laterales, el último desciende
hacia atrás. Menos de siete pares de testículos. ........oooooooooooooocoo.o.o..
Buche o intestino medio (= estómago) sin ciegos laterales. Siete pares de testículos

A a ld a den en Ni e « el MT cd Gloiobdella michaelseni (Blanchard)
Color claro, crema o ligeramente amarillento. Glándulas salivales difusas. Faringe
normal hasta el somito XI .................... Helobdella chilensis Blanchard
Color gris oscuro. Glándulas salivales compactas. Faringe muy larga, hasta XITI/
TA A MI AA IS. a CABO E. COIE UI, Adaetobdella cryptica Ringuelet
Siete pares de ciegos en el buche............... Batrachobdella dubia Ringuelet
Un solo par de ciegos (Postciegos en XIX) en el buche .....0....ooooocoo o...

A A e A Helobdella similas Ringuelet

Somito completo formado por tres o cuatro anillos. El dorso de los anillos, por lo
menos los de la región cefálica, dividido en áreas poligonales (tegumento tesela-
do). El cotilo tiene cordones radiados del lado ventral. Sanguijuelas terrestres
E TO A MESOBDELLIDAE
Somito completo formado por cinco anillos (los nefroporos se repiten ventral-
mente cada cinco anillos). Cara ventral del cotilo, lisa. Tegumento sin teselas.
Sangujuelas acuáticas O MeRLEStES 0 AA TN PI A A
Somito completo 3-anillado. Nefroporo 2 a 16 ventrales, los del par 17 en un solo
orificio en el origen del cotilo, en la línea media ventral. Cuarto y quinto par de
ojos separados por un anillo. Chile continental meridional ..................
A IM A Mesobdella gemmata (Blanchard)
Somito completo 4-anillado. Nefroporo 2-16 marginales, el par 17 en pequeñas
aurículas marginales. Cuarto y quinto par de ojos separados por dos anillos ..
PR RI A A Nesophilaemon skottsbergi (Johansson)
Cinco pares de ojos conspicuos. Gonoporos separados por menos de cinco anillos,
desde 1/2+1+1/2 hasta 1/2+3+1/2 anillos .............. SEMISCOLECIDAE
A Patagoniobdella Ringuelet
Seis pares de ojos poco o nada visibles. Gonoporos separados por cinco anillos.
“Liguay”, sanguijuela gigante, acuática O anfibia, O terrestre... ...oooooo.oo.o.o..
AMERICOBDELLIDAE............oooooo.. Americobdella valdivana (Philippi)
Gonoporos separados por 1/2+3+1/2 o por 1/2+2+1/2 anillos ..............
O o od A Ae Patagoniobdella variabilis (Blanchard)
Gonoporos separados por 1/2+1+1/2 o por 1/2+2 anillos...................
Patagoniobdella fraterna Ringuelet

PP... ............. +... o... +... +... +... ..<s.<s.<s +...

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19

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22

23

178

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

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*El autor dio a la bibliografía el título de “Bibliografía
relativa a los Hirudíneos de Chile”. En ella, sin embargo,
no aparecen todas las citas del texto, lo cual no es suscepti-
ble de subsanar por tratarse de obras muy antiguas que no
están a nuestro alcance.

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 181-205, 1985.

EL GENERO MYCETOPHILA MEIGEN, 1803, EN LA PATAGONIA
(DIPTERA, MYCETOPHILIDAE)
Parte IX
DESCRIPCION DE VEINTE ESPECIES NUEVAS

Genus Mycetophila Meigen, 1803, in Patagonia
(Diptera, Mycetophilidae)
Part IX
Description of twenty new species

JOSE PEDRO DURET*

RESUMEN

Se ha continuado el estudio de las especies del grupo M.
clavigera-M. comifera, ambas Freeman, 1951, iniciado en la
Parte VIII. Se agregan datos sobre algunas especies cono-
cidas. Son descritas veinte especies nuevas, con las varie-
dades y formas encontradas. Se incluye una clave proviso-
ria, basada en la genitalia macho, para las actuales cuaren-
ta y una especies del grupo. Los nuevos taxones son: M.
pseudoaraucana, M. yamanasi, M. vartable, M. indigena, M.
indiana, M. puelchesi, M. pinarensis, M. mapuchesi, M. bifor-
mata, M. neomapuchesi, M. macrocephala, M. scourfield:, M.
pucara, M. argentinensis, M. temucoensis, M. neoclavigera, M.

magallanensis, M. ibarragrassoi, M. clydeae, M. neoparapicalis.

INTRODUCCION

En la Parte VIII (en prensa) se inició el estudio
de las especies próximas a M. clavigera-M. coni-
fera, el que se continúa ahora. Las nuevas es-

*Adscrito al Museo Argentino de Ciencias Naturales
“Bernardino Rivadavia”, Buenos Aires, Particular: Bi-
llinghurst 2559 -1425- Buenos Aires, Argentina.

ABSTRACT

The study of species belonging to group M. clavigera-M.
conifera, started in Part VIII, has been continued. Data on
some known species have been added. Twenty new
species are hereby described, with the varieties and forms
that have been found. A provisional key based on male
genitalia of the forty-one actual species of the group, is
also included. New taxons are: M. pseudoaraucana, M.
yamanas:, M. variable, M. indigena, M. indiana, M. puelchesi,
M. pinarensis, M. mapuchesi, M. biformata, M. neomapuches,,
M. macrocephala, M. scourfieldi, M. pucara, M. argentinensis,
M. temucoensis, M. neoclavigera, M. magallanensis, M.
ibarragrassoi, M. clydeae, M. neoparapicalis.

Keywords: Diptera. Mycetophilidae. Mycetophila.

Taxonomy. Patagonia.

pecies se han incluido provisoriamente en el
dilema 48 de la clave de Freeman (1951: 101).
Se exceptúa M. parapicalas Fr. 1954 (n.n. M.

- apicalis Freeman, 1951), dilema 45, que trata-

mos al final. Los caracteres generales del gru-
po fueron enumerados en la parte anterior.
Son especies muy semejantes, de coloración
variable, siendo indispensable para identifi-

182

carlas el examen de la genitalia disecada. Sólo
se ha trabajado con machos. Las especies cita-
das tienen tres setas en la propleura y en la
pteropleura. La longitud de la horquilla pos-
terior del ala se compara con la de M. conifera
Fr., 1951 (fig. 344). Los nuevos taxones se
presentan ordenados según su colocación en
la clave del grupo, que se agrega al final.

MATERIAL Y METODOS
DE TRABAJO

Son los señalados en la Parte VIII, así como el
origen de los ejemplares estudiados.

ACLARACIONES

Los machos de Chile, cuyo colector no se men-
ciona, fueron obtenidos por el Sr. Luis E. Pe-
ña; los de Monte Alto por la Lic. Prof. Dolly
Lanfranco y los de Pucará, Argentina, por el
Ing. Agr. Sergio Schajovskoy, a quienes reite-
ramos nuestro agradecimiento por su ayuda.
Todos los machos que acompañan a los holoti-
pos de las especies nuevas son paratipos. Los
dibujos fueron realizados por el autor a una
misma escala y los ejemplares se conservan en
su colección particular. Las genitalias de las
especies nuevas no se describen, remitiendo al
lector a las figuras correspondientes. Tampo-
co se discuten las relaciones de cada taxón, por
quedar ésto aclarado en la clave. Los nombres
de algunas especies nuevas recuerdan tribus
indígenas de la Patagonia: araucana, mapu-
che, puelche y yámana.

I. ESPECIES CONOCIDAS

Mycetophila conifera Freeman, 1951.
Duret, VIII (en prensa), figuras 1-3.

A las descripciones anteriores agregamos: me-
sonoto con centro marrón, más o menos oscu-
ro y uniforme o con bandas oscuras nítidas; las
manchas amarillentas ántero-laterales son de
tamaño variable; generalmente una capa, no
densa, de polen ceniciento cubre los lados,
desde el borde anterior hasta el escutelo, ex-
tendiéndose a las pleuras. Describimos ahora
una variación frecuente, la que por sus carac-
teres podría ser un taxón vecino.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Variación a) MACHO semejante a M. conafera.
Se diferencia por la genitalia.

Genitalia (Fig. 1). Dististilo dorsal con una apó-
fisis triangular en el ápice del borde externo;
lóbulo piloso interno grande. Dististilo ventral
con tres bastones iguales.

Material estudiado: 15 3. Macho tipo N? 13467
de CHILE, Malleco, cordillera Las Raíces,
1600 m, 11-1979 y 11-1980, 5 3; Lonquimay,
Las Raíces, 1600 m, I1-1980, 3 d; Nahuelbuta,
1-1979 y 1-1982, 2 3. Osorno, Pucatrihue,
1700 m, I11-1980, 1 3; Puyehue, 11-1979, 1 g y
Puyehue, Aguas Calientes, XII-1981, 1 G.
Ñuble, cordillera Chillán, Las Trancas. II-
1980, 1 d. Magallanes, Ultima Esperanza, Se-

- no Otway, río Caleta, 11-1961, 1 g (Cekalovic

col.).

Observación: El N* 13088 de Las Raíces presen-
ta una genitalia mixta, de un lado la forma
típica de conifera y en el opuesto el de la vanie-
dad a).

Mycetophila clavigera Freeman, 1951
(Figs. 2-4)
Duret, VIII: figs. 4-7.

Es una especie particularmente variable. Se
describen algunos de los tipos hallados, que
repartimos en dos secciones.

Sección 1. Dististilo ventral con la prolonga-
ción basal interna apenas insinuada.

Es M. clavigera s. str. (VII: figs. 4-6). Distis-
tilo ventral con bastones subapicales cortos
(VIII: fig. 5) o poco más largos (fig. 2). Mate-
rial estudiado: muchos machos de ARGEN-
TINA y CHILE. (Ver Duret, VIII).

SeccióN II. Dististilo ventral con la prolonga-
ción basal más desarrollada.

Forma a). Genitalia con el edeago engrosado
en la parte distal, (VIII: fig. 7). Color general
del adulto oscuro. Tibia II con 2 setas ant., 4
dors., 2 post. y 1 ventral; T. MI con 5 ant., 4
dors. y 2 post.

Material estudiado: 13 4. ARGENTINA, Neu-
quén, Parque Nacional Lanín, Pucará, DO
CHILE, Malleco, Las Raíces, 3 d y Nahuelbu-
ta, 3 d. Magallanes, Monte Alto, 2 4. Macho
tipo N* 14973, de Pucará.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Forma b). Dististilo ventral (fig. 3) de ápice
grueso; prolongación basal interna con una
clava larga y dos bastones poco más cortos.
Matenal estudiado: 26 $. CHILE, Malleco, cor-
dillera Las Raíces, 3 3 y Nahuelbuta, 1 dG.
Cautín, W. de Temuco, La Selva, 1 d. Maga-
llanes, Monte Alto, 21 gd. Macho tipo N*
13156, de Monte Alto.

Forma c). Genitalia pequeña y clara. Dististilo
dorsal con ápice inferior interno largo y delga-
do. Dististilo ventral chico, cónico (fig. 4).
Material estudiado: 5 d. ARGENTINA, Neu-
quén, P.N. Lanín, Pucará, 1 d. CHILE, Malle-
co, cordillera Las Raíces, 2 d y Nahuelbuta, 1
3. Magallanes, Monte Alto, 1 4. Macho tipo
N? 11156 de Pucará. Los machos de Malleco
tienen balancines amarillos.

Mycetophila araucana Lane, 1962
(figs. 5-11)

Lane describió esta especie en base a un solo
macho capturado en la provincia de Ñuble,
Chile, y la colocó en el subgénero Oromyceta
por los caracteres de su horquilla posterior:
“Upper vem free at base the lower one ending quite
before wing margin, the branches short and half the
length of stem” y en sus comentarios citaba a M.
cornuta Freeman, 1951, como los dos únicos
Oromyceta hallados en la región patagónica.
Freeman cuando con diez ejemplares descri-
bió a M. cornuta no señaló anomalías en las
nervaduras, pero en la fotografía del ala (Fr.,
1951, fig. 326) se ve la vena inferior terminan-
do poco antes del borde alar.

Nosotros examinamos las alas de numero-
sos ejemplares de M. cornuta, determinados
por genitalia macho y comprobamos que to-

dos tenían sus venas normales. Además, he-

mos revisado las alas de miles de Mycetophila
patagónicos y nunca encontramos un ejem-
plar de Oromyceta. A su vez, la genitalia de M.
araucana es muy diferente a las de otras Oromy-
ceta neotropicales descritas por Lane. En cam-
bio, su genitalia (Lane, 1962, fig. 7) es similar a
las del grupo clavigera-comfera.

Tenemos una serie de ejemplares que por
su genitalia se aproximan mucho a M. arauca-
na, aunque presentan elementos ausentes en
el dibujo de Lane: dististilo dorsal (fig. 5) con

183

una espina o seta gruesa (dos, a veces), coloca-
da cerca del ápice del borde externo; dististilo
ventral (fig. 6) con un denso grupo de setas en
el ápice. Además, se observan variaciones que
hacen suponer la existencia de dos formas, a)
la típica de Lane (tres bastones largos y un
lóbulo piloso distal grande) con los agregados
que hemos señalado (figs. 5-7); b) una atípica
(dos bastones largos y uno menor) (figs. 8-11).
Pero, debemos aclarar que junto a machos
típicos de ambas formas se encuentran genita-
lias con elementos intermedios.

Resumiendo: M. araucana tal como fue di-
bujada por Lane no la hallamos aún, a pesar
de tener material del área típica; en cambio
examinamos ejemplares que, con las adiciones
señaladas, podrían pertenecer a esta especie.
En la duda y hasta que se estudie el holótipo de
Lane, preferimos no innovar y atribuir a esta
especie nuestros ejemplares. Referente a Oro-
myceta pensamos que tratándose de un subgé-
nero de áreas más cálidas no se extendería
hasta la Patagonia.

A la descripción de Lane agregamos:
MACHO. Longitud del ala 2.1.-2.7. mm. Me-
sonoto generalmente oscuro, pero puede acla-
rarse hasta ser casi amarillento. Ala mancha-
da, mancha central nítida, distal atenuada;
horquilla posterior nítidamente distal a la an-
terior, a veces es aún más corta, casi la mitad
de su tallo. Balancines amarillo pálido a ma-
rrón claro. En general, los ejemplares del nor-
te patagónico son más claros, con patas amari-
llentas y los de la región magallánica tienen
mesonoto oscuro y patas con tinte castaño.
Material estudiado: a) forma típica (tres bastones
largos), 7 4. CHILE, Nuble, cordillera Chi-
llán, 1100 m, I1-1980, 1 d; Las Trancas, II-
1980, 1 3; Shangri-lá, 1400 m, 111-1971, 1 g y
1-1980, 2 3. Malleco, cordillera Las Raíces,
1700 m, I11-1979, 1 8. ARGENTINA, Neu-
quén, P.N. Lanín, Pucará, 11-1972, 1 gd. Ma-
cho tipo N* 14801, de Shangri-lá). b) forma
atípica (dos bastones largos y uno corto), 16 d.
CHILE, Malleco, cordillera Las Raíces,
1600 m, 11-1979 y I1-1980, 7 3. Ñuble, cordi-
llera Chillán, 1100 m, 11-1980. Lonquimay,
Las Raíces, I1-1980, 2 d. Magallanes, Ultima
Esperanza, Monte Alto, X-XI-1975, 3 gd. AR-
GENTINA, Neuquén, P.N. Lanín, Pucará, X-

184

1971, 111-1972 y VI1-1973, 3 3. Macho tipo
N* 15852, de Pucará.

II. ESPECIES NUEVAS

Mycetophila pseudoaraucana sp. n.
(figs. 12-15)

A un primer examen esta especie podría des-
doblarse en dos taxones diferentes, pero por
sus variaciones individuales preferimos des-
cribir una sola especie con dos formas, clara y
oscura. Un macho de la forma clara es el holót1-
po de la especie.

I. Forma clara (figs. 12-13).

MACHO. Longitud del ala 2.1.-2.5. mm. Co-
lor general castaño, patas claras y alas poco
manchadas.

Cabeza: Clípeo oscuro; palpos y partes bucales
poco más claros. Occipucio opaco, marrón ne-
gro, setas cortas oscuras. Antenas oscuras, seg-
mentos basales más claros, a veces amarillen-
tos. Tórax: Mesonoto marrón uniforme o con
tres bandas poco nítidas, ángulos ántero-late-
rales y extremo superior del pronoto más cla-
ros, con tinte amarillento; setas cortas oscuras.
Escutelo castaño con borde claro. Pleuras ma-
rrón oscuro, aclarándose en la parte inferior.
Patas amarillentas; coxas I-I1II amarillo claro.
Tibia II con 2 setas ant., 4 dors., 4(3) post. y 1
ventral; T. III con 5 ant., 4 dors. y 2 post.
cortas. Alas con débil tinte castaño; mancha
central pequeña, poco nítida; distal atenuada,
a veces ausente; horquilla posterior poco dis-
tal, como M. conifera. Balancines claros.
Gemitala (figs. 12-13). Pequeña, clara, poco
pilosa. Edeago en general semejante a M. neo-
conifera Duret (VIII: fig. 15), pero algo más
delgado.

Matenal estudiado: 23 3. Holotipo N* 14627 y
2 paratipos de CHILE, Malleco, cordillera
Nahuelbuta, 1300 m, XI-1981 y I-1982. Otros
paratipos: Cautín, W. de Temuco, La Selva,

700 m, 7 3 y Chacamo, 600 m, 1 3, todos .

XII-1980. Osorno, N.W. volcán Osorno, I-
1980, 1d. ARGENTINA, Neuquén, P.N. La-
nín, Pucará, XI-1971 a 111-1973, 11 3.

11. Forma oscura (figs. 14-15).
MACHO. Longitud del ala 2.1.-2.9. mm. Se-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

mejante a la anterior, pero más oscura. Occi-
pucio con una capa leve de polen ceniciento y
setas cortas doradas. Mesonoto oscuro unifor-
me o con bandas insinuadas; mancha clara
ántero-lateral pequeña o ausente; polen esca-
so lateralmente. Patas con tinte castaño. T. HI.
con 5 setas ant., 5 dors. y 3-4 post. Balancines
amarillentos con tinte castaño.

Genitalía (figs. 14-15). Más grande y más pilo-
sa. Edeago semejante a M. paraconifera Duret
(VIII: fig. 18) pero más delgado.

Material estudiado: 31 $. Macho tipo N* 11992
de CHILE, Magallanes, Ultima Esperanza,
Monte Alto, XI-XII-1975, 23 gd; Mina Chini-
ta, VIII-1963, 1 3; seno Otway, río El Ganso,
V-1961, 1 3 (determinado como Fungivora
subrecta Freeman, 1954, por A. Stone), y río
Santa María, I-1976, 1 3, todos Cekalovic col.;
isla Navarino, Puerto Toro, IV-1972,1 3d. AR-
GENTINA, Neuquén, P.N. Lanín, Pucará, X-
1971 y IX-1972, 2 8. Santa Cruz, lago Argen-
tino, 11-1953, 2 g (Willink. col.).
Observación: se encuentran ejemplares con ca-
rácteres intermedios.

Mycetophila yamanasi sp. n.
(figs. 16-18).

MACHO. Longitud del ala 2.5. mm.
Semejante a M. clavigera. Color general ma-
rrón oscuro; patas oscurecidas; Tibia II con 2
setas ant., 4 dors., 4 post. y 1 ventral; T. III con
5 ant., 4 dors. y 2 post. Alas con débil tinte
castaño uniforme, poco mayor en la celda cos-
tal; mancha central pequeña, débil; distal ate-
nuada; horquilla posterior nítidamente distal
a la anterior; balancines oscurecidos.
Genitalia (figs. 16-18). Dististilo dorsal como
M. clavigera.

Material estudiado: el macho holotipo N? 11470
de CHILE, Magallanes, Ultima Esperanza,
Monte Alto, XI-1975.

Mycetophila variable sp. n.
(figs. 19-28).
La especie se identifica por su dististilo ventral
con dos elementos, clavas o bastones. Colora-
ción general variable.

MACHO. Longitud del ala 2.3.-2.8 mm.
Se describe el holótipo N* 12815, ejemplar
moderadamente claro.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Cabeza oscura; antenas marrones. Tórax: me-
sonoto marrón claro uniforme; bordes ante-
rior y laterales más claros; pleuras marrones.
Patas amarillo claro; coxa III algo oscurecida
en la base; fémures con tinte castaño en los
bordes dorsal y ventral; F. MI oscurecido en el
ápice. Tibia II con 2 setas ant., 4 dors., 4 post.
(mayor la distal) y una ventral; T. 111 con 5
ant., 4 dors. y 3 post. cortas. Alas con manchas
castaño claro; la central bien visible; la distal
más clara, atenuándose hacia la parte poste-
rior; horquilla posterior poco más distal que
M. conafera. Balancines con cabezuela castaño
claro. Abdomen marrón oscuro, setas claras.

Gemitalia (figs. 19-22), castaño claro.

Observaciones. Esta especie presenta variacio-
nes en su coloración y en la genitalia. El color
del tórax y patas va del castaño amarillento
hasta el marrón casi negro, predominando
éste último en los machos magallánicos. Algu-
nos ejemplares de Pucará tienen el tórax, pa-
tas y balancines amarillentos. Las alas son bien
manchadas o claras, con la mancha central
muy atenuada. Los balancines pueden ser cla-
ros, aún en ejemplares oscuros. El edeago a
veces tiene la cabezuela alargada como M.
araucana (fig. 7).
Dentro de la especie pueden distinguirse tres
formas de genitalia:

forma clara (típica) (figs. 19-22). Generalmen-
te son ejemplares claros del norte patagóni-
co. Dististilo ventral cónico, poco piloso.

forma oscura (figs. 23-25). Machos oscuros,
predominando en el sur. Dististilo ventral
ancho, grueso, bien piloso.

forma intermedia (figs. 26-28). Edeago tipo M.
neoconmifera (VIII: fig. 15).

Maternal estudiado: 42 3. Forma clara: 18 dG.
Holótipo N* 12815 y 10 d de ARGENTINA,
Neuquén, P.N. Lanín, Pucará, 111-1971 a
VIII-1973. CHILE, Malleco, cordillera Las
Raíces, 1600 m, I1-1980, 2 gd. Llanquihue, N.
de Correntoso, El Chingue, 1-1980, 1 g. Ma-
gallanes, Monte Alto, X-X1-1975, 3 d; río
Santa María, 1-1976, 1 gd (Cekalovié col.). For-
ma oscura: 13 gd. Tipo N* 13242 y 8 d de
CHILE, Magallanes, Monte Alto, X-XI-1975.
Llanquihue, N. de Correntoso, El Chingue,

185

1-1980, 1 gd. Malleco, cordillera Las Raíces,
1000 m, 11-1980, 2 4. ARGENTINA, Tierra
del Fuego, lago Lapataia, 1-1977, 1 3 (Stange
col.). Forma intermedia: 11 3. Tipo N? 7794 y 4
gd de ARGENTINA, Neuquén, P.N. Lanín,
Pucará, XI-1971 a 111-1973. CHILE, Osorno,
N.W. volcán Osorno, La Picada, 1-1980, 2 d;
Cordillera Nahuelbuta, 1300 m, I-1982, 1 gd.
Ñuble, cordillera Chillán, 11-1980, 1 4. Malle-
co, cordillera Las Raíces, 1700 m, 11-1979, 1
3. Magallanes, Monte Alto, XI-1975, ld.

Mycetophila indigena sp. n.
(fig. 29).

MACHO. Longitud del ala 2.2. mm. Color
general muy oscuro, patas amarillentas con
tinte castaño, alas claras. Cabeza marrón ne-
gro. Mesonoto con tres bandas centrales ma-
rrón oscuro poco nítidas, bordes anterior y
laterales poco más claros, setas cortas con re-
flejos dorados. Coxas con un débil tinte casta-
ño difuso; fémures oscurecidos en los bordes.
Tibia II con 2 setas ant., 4 dors., 3 post. iguales
y 1 ventral; T. III con 5 ant., 5 dors. (basal
corta) y 1 post. Alas claras, con débil tinte
castaño uniforme; mancha central apenas visi-
ble, distal ausente; horquilla posterior bastan-
te distal a la anterior, como M. multiplex (Fr.,
1951, fig. 327). Balancines oscuros. Abdomen
oscuro, con setas doradas.

Genitalia (fig. 29). Castaño claro. Edeago tipo
M. clavigera, delgado.

Material estudiado: el macho holótipo N” 13247
de CHILE, Magallanes, Ultima Esperanza,
Monte Alto, XI-1975.

Mycetophila indiana sp. n.
(fig. 30).

Muy próxima a la anterior; semejantes adulto
y genitalia.

MACHO. Longitud del ala 2.2. mm. Color
general marrón, patas amarillentas, alas poco
manchadas. Mesonoto marrón oscuro unifor-
me, bordes anterior y laterales poco más cla-
ros, pilosidad corta dorada; resto del tórax
marrón con una tenue capa de polen cenicien-
to. Patas amarillo pálido; fémures II-I11I algo
oscurecidos en los bordes dorsal, ventral y ex-
tremo apical. Tibia 111 con 5 setas ant., 4 dors.

186

(basal corta) y 2 posterior. Alas claras, con
suave tinte castaño; mancha central pequeña,
nítida, la distal insinuada; horquilla posterior
poco más distal que M. conifera. Balancines
OSCUTOS.

Gemtalia: (fig. 30). Edeago tipo clavigera.
Material estudiado: el macho holótipo N* 8377
de ARGENTINA, Neuquén, P.N. Lanín, Pu-
cará, 1-1972.

Mycetophila puelchesi sp. n.
(figs. 31-33).

MACHO. Longitud del ala 2.1.-2.4. mm. Co-
lor general oscuro; patas amarillentas con tin-
te castaño; ala clara, apenas manchada. Meso-
noto marrón a marrón negro uniforme; ángu-
los ántero-laterales poco más claros; setas cor-
tas oscuras con reflejos bronceados. Postnoto
y pleuras marrones. Patas de color uniforme,
sin manchas, excepto ápice de los fémures
algo oscurecidos. Tibia II con 2 setas ant., 5
dors. (basal corta), 4 post. (mayor la distal) y 1
ventral; T. III con 5 ant., 5 dors. (basal corta) y
3-4 post. cortas. Ala clara, con débil tinte casta-
ño; mancha central pequeña, poco visible, la
distal atenuada, prácticamente ausente; hor-
quilla posterior poco más distal que M. conafe-
ra. Balancines marrón claro u oscuros. Abdo-
men con tegumento y setas Oscuros.
Genttalía (figs. 31-33). Pequeña y clara.
Material estudiado: 6 $. Holotipo N* 8544 y 2 d
de ARGENTINA, Neuquén, P.N. Lanín, Pu-
cará, 111-1972 a 111-1973; lago Nahuel Huapi,
isla Victoria, M1-1972, 1 $ (Naumann col.).
CHILE, Osorno, Port. Puyehue, 1200 m, I-
1969, 1 3. Magallanes, Monte Alto, XII-1975,
IA

Mycetophila pinarensis Sp. N.
(figs. 34-36).

Color general claro, patas amarillas, alas poco
manchadas.

MACHO. Longitud del ala 2.8 mm.

Cabeza: clípeo castaño, palpos más claros; occi-
pucio marrón oscuro, setas con reflejos dora-
dos. Antenas oscuras, base más clara. Tórax:
propleura y protórax castaño amarillentos.
Mesonoto con tres bandas centrales marrón
claro; todo el resto es más claro, con tinte

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

amarillento. Escutelo marrón en la base y bor-
de más claro. Postnoto marrón claro. Pleuras
marrones. Patas amarillas; coxas más claras;
fémures I-II apenas oscurecidos en el ápice.
Tibia II con 2 setas ant., 5 dors. (basal corta), 4
post. (mayor la distal) y 1 ventral; T. MM. con 4
ant., 5 dors. (basal corta) y 2 post. Alas claras,
con suave tinte castaño; mancha central pe-
queña, distal muy atenuada; horquilla poste-
rior poco distal. Balancines claros. Abdomen:
tergitos marrón oscuro, esternitos más claros.

Gemtalia (figs. 34-36), castaño muy claro.
Material estudiado: el macho holotipo N* 10641
de CHILE, Concepción, Pinares, XII-1964.

Mycetophala mapuches: sp. n.
(figs. 37-39).

Color general marrón; patas amarillentas;
alas poco manchadas.

MACHO. Longitud del ala 2.6. mm.

Cabeza oscura. Antenas marrón oscuro. “Tó-
rax marrón; mesonoto marrón uniforme,
bordes poco más claros; setas cortas con re-
flejos dorados. Escutelo con borde más claro.
Patas amarillentas con débil tinte castaño, más
intenso en el borde dorsal de los fémures y
ápices de F. II. Tibia II con 2 setas ant., 4
dors., 3 post. (mayor la distal) y 1 ventral; T.
III con 5-6 ant., 4 dors. y 2 post. cortas. Alas
con suave tinte castaño claro; mancha central
pequeña, poco nítida; distal atenuada; hor-
quilla post. poco más distal que M. comafera.
Balancines con cabezuela marrón. Abdomen
marrón uniforme, con setas claras.

Gentalia (figs. 37-39). Edeago grueso, castaño.
Material estudiado: el macho holotipo
N* 15347, de ARGENTINA, Neuquén, P.N.
Lanín, Pucará, IV-1973.

Mycetophala biformata sp. n.
(figs. 40-44).

Esta especie presenta dos coloraciones, una
oscura y otra más clara o amarillenta, siendo los
demás caracteres semejantes, excepto el edea-
go aislado, que muestra dos aspectos diferen-
tes. En los machos oscuros (fig. 39) es del tipo
M. conifera y en los claros (fig. 41) es más
ancho, abierto, con la cabezuela alargada y

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

adelgazada. No sabemos si esta forma desu-
sual en el grupo clavigera-conifera es la real o el
resultado de un estiramiento durante la disec-
ción. Provisoriamente colocamos los ejempla-
res claros junto a los que consideramos nor-
males. La descripción de la especie está basada
en un espécimen oscuro.

MACHO. Longitud del ala 2.2-3.2 mm. (Figs.
40-42).

Cabeza: clípeo marrón, polinoso; palpos casta-
ño claro; occipucio negro, polinoso, con setas
doradas. Antena con los segmentos basales
marrón claro o amarillento, el resto oscure-
ciéndose. Tórax: mesonoto marrón amarillen-
to uniforme o con bandas insinuadas; setas
cortas doradas. Propleura y pronoto castaño
claro. Escutelo marrón con borde claro. Post-
noto marrón amarillento. Pleuras marrón,
más claras en la parte inferior. Patas amarillas
con débil tinte castaño; fémures I1-I11 apenas
oscurecidos en los ápices. Tibia II con 2 setas
ant., 5 dors. (basal corta), 4 post. (mayor la
distal), 1 ventral y 1 póstero-ventral, un poco
menor, distal y colocada casi en la misma línea;
T. III con 5(6) ant., 5 dors. y 4 post. cortas.
Alas poco manchadas, la central pequeña, níti-
da, la distal castaño claro, uniforme, sin límites
definidos; celda costal con un ligero tinte cas-
taño; horquilla posterior poco más distal que
M. conifera. Balancines con cabezuela oscura.
Abdomen oscuro, pelos cortos oscuros con re-
flejos bronceados.

Genitalia (figs. 40-42). castaño claro.

Forma clara. El macho N” 13821, con ala de
3 mm, es mucho más claro, tiene palpos ama-
rillentos, occipucio marrón; mesonoto amari-
llo con tinte castaño y resto del tórax castaño
claro amarillento, con una delgada capa de
polen ceniciento; coxas y fémures amarillo
claro, éstos con débil tinte castaño en los bor-
des y ápice; alas con manchas más atenuadas;
balancines amarillo pálido; abdomen marrón,
con pelos dorados.

Gemitalia (figs. 43-44).

El macho N” 13951 es más pequeño, ala de
2.2. mm, con mesonoto castaño claro y balan-
cines amarillentos.

Material estudiado: 7 $. Forma oscura (típica): 5

187

3. Holotipo N* 12682 y 2 paratipos de AR-
GENTINA, Neuquén, P.N. Lanín, Pucará,
VI-1972 a VII-1973. CHILE, Concepción, Pi-
nares, XII-1964, 1 3 (Cekalovié col). Osorno,
Pucatrihue, Costa, 111-1968, 1 3. Forma clara:
2 gd, ejemplar tipo N* 13821 y N* 13951, am-
bos de CHILE, Ñuble, cordillera Chillán,
1100 m, 11-1980.

Mycetophila neomapuches: sp. n.
(figs. 45-49).

Especie muy próxima a mapuches! sp. n.
MACHO. Longitud del ala 2.1-3 mm. Cabeza
oscura. Mesonoto marrón, sin bandas o ape-
nas insinuadas, bordes anterior y laterales po-
co más claros; pelos cortos oscuros. Escutelo
con base oscura y borde más claro, algo poli-
noso. Postnoto y pleuras marrón, polen esca-
so; hipopleura más clara. Patas amarillo claro,
sin manchas; coxa 1 con setas castañas; Tibia
II con 2 setas ant., 5 dors. (basal corta), 4 post.
(mayor la distal) y 1 ventral; T. MI con 5 ant., 5
dors. (basal corta) y 2-3 post. cortas. Ala
totalmente clara o con pequeña mancha cen-
tral; su parte anterior con un débil tinte casta-
ño amarillento; horquilla posterior igual a M.
comifera o poco más distal. Balancines claros.
Abdomen oscuro, setas doradas.

Genitalia (figs. 45-49).

Matenal estudiado: 12 3. Holotipo N” 11231 y
2 machos de ARGENTINA, Neuquén, P.N.
Lanín, Pucará, X-1971 y IV-1972. CHILE,
Osorno, Pucatrihue, I1-1980, 8 3. Llan-
quihue, N. de Correntoso. El Chingue, 1-
1980, 13.

Mycetophila macrocephala sp. n.
(figs. 50-52).

MACHO. Longitud del ala 3.1. mm.

Cabeza oscura. Base de antena poco más clara.
Mesonoto castaño claro amarillento, con tres
bandas centrales marrón oscuro nítidas; setas
cortas oscuras. Escutelo oscuro en el centro y
amarillento en los bordes. Postnoto y pleuras
marrones, suturas amarillentas. Patas amarl-
llas; coxa 1 con setas cortas marrones. Tibia II
con 2 setas ant., 4 dors. (basal corta), 4 post.
(mayor la distal) y 1 ventral; T. HI con 5 ant., 5
dors. (basal corta) y 3 post. Alas manchadas;

188

mancha central marrón, pequeña; la distal
castaño claro, se extiende desde la celda costal
hasta cubrir la celda anal, es un poco más
intensa en las celdas R; y R¡; horquilla poste-
rior poco distal, como M. conafera. Balancines
amarillos. Abdomen marrón oscuro, setas con
reflejos dorados.

Genitalía (figs. 50-52), amarillenta con tinte
castaño.

Material estudiado: el macho holótipo N* 13317
de CHILE, Llanquihue, N. de Correntoso, El
Chingue, I-1980.

Mycetophila scourfieldi sp. n.
(figs. 53-55).

Color general oscuro, opaco; ala con pequeña
mancha central.

MACHO. Longitud del ala 2.2. mm.
Occipucio negro, setas cortas con reflejos
bronceados. Antenas oscuras, base del seg-
mento I del flagelo más claro; segmentos basa-
les del flagelo el doble de su ancho, el resto
algo menores. Tórax con escaso polen ceni-
ciento; mesonoto marrón oscuro uniforme;
bordes anterior y laterales poco más claros,
polinosos; setas cortas con reflejos claros. Es-
cutelo marrón oscuro en el centro, bordes más
claros; postnoto oscuro, más claro a los lados;
pleuras marrón oscuro. Patas amarillentas con
tinte castaño; coxa Í con setas cortas marrones
con reflejos bronceados; C. III oscurecida en
la base. Tibia II con 2 setas ant., 4 dors. (basal
corta), 4 post. (mayor la distal) y 1 ventral; T.
III con 5 ant., 5 dors. (basal corta) y 3 post.
cortas. Alas claras, con suave tinte castaño;
mancha central pequeña, la distal práctica-
mente ausente; horquilla posterior poco más
distal que M. conifera. Balancines oscuros. Ab-
domen oscuro, setas cortas doradas.
Genitalía (figs. 53-55), castaño claro.

Matenal estudiado: el macho holótipo N” 15118
de CHILE, Magallanes, islas del Cabo de Hor-
nos, Bahía de Scourfield, I1-1980.

Mycetophila pucara sp. n.
(figs. 56-58).

Color general marrón claro, casi amarillento;
patas amarillas.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

MACHO. Longitud del ala 2.6.-3,3 mm.
Cabeza, incluyendo antenas y tórax, con una
delgada capa de polen ceniciento; clípeo y seg-
mentos basales de los palpos marrones, los dos
distales más claros; occipucio marrón negro,
setas cortas con reflejos dorados. Antenas ma-
rrón oscuro; los 5-6 segmentos basales del fla-
gelo miden el doble de su ancho, los restantes
se acortan. Tórax: propleura, pronoto y me-
sonoto marrón claro, éste sin bandas nítidas;
borde anterior y laterales más claros o con
débil tinte amarillento; setas cortas con re-
flejos dorados. Escutelo con base oscura y an-
cho borde más claro; postnoto marrón en la
base más claro el resto; pleuras marrones. Pa-
tas amarillas, fémur 111 apenas oscurecido en
el ápice. Tibia II con 2 setas ant., 5 dors. (basal
corta), 4(3) post. (mayor la distal) y 1 ventral;
T. HI con 5 ant., 5 dors. (basal corta) y 3 post.
Ala clara, con débil tinte castaño uniforme;
mancha central pequeña, nítida; horquilla
post. poco distal. Balancines oscuros. Abdo-
men marrón oscuro, setas cortas doradas.
Genitaliía (figs. 56-58). Castaño muy claro.
Edeago grande.

Matenal estudiado: '7 3. Holotipo N? 12451 y 1
paratipo de ARGENTINA, Neuquén, P.N.
Lanín, Pucará, X-1971. CHILE, Osorno, Pu-
catrihue, I1-1980, 1 3; Puyehue, 1700 m, I1-
1979, 1 gd y Puyehue, Aguas Calientes, XII-
1981, 1 3. Malleco, Las Raíces, 1700 m, II-
1979, 1 d. Llanquihue, N. Correntoso, El
Chingue, 1-1980, 1 d.

Observaciones: junto a machos claros, casi ama-
rillentos, hay otros más oscuros; la base de las
antenas pueden ser claras y la capa de polen
atenuarse mucho.

Mycetophila argentinensis sp. n.
(figs. 59-61).

MACHO. Longitud del ala 2.2.-3.1 mm.

Cabeza: clipeo marrón; palpos más claros; oc-
cipucio marrón oscuro, setas doradas y escaso
polen. Antena oscura, más clara en la base.
Tórax: propleura, pronoto y mesonoto castaño
claro amarillento, éste último con tres bandas
centrales marrones poco nítidas, setas con re-
flejos dorados. Escutelo marrón con borde
más claro. Postnoto y pleuras marrones. Patas

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

amarillentas; coxas más claras; C.I. con setas
marrones con reflejos dorados. Tibia 11 con 2
setas ant., 5 dors. (basal corta), 3 post. iguales y
1 ventral; T. III con 5(6) ant., 5 dors. (basal
corta) y 3-4 post. Ala manchada, la central
pequeña, marrón claro, la distal con tinte cas-
taño claro uniforme; horquilla posterior poco
distal a la anterior. Balancines amarillo pálido.
Abdomen marrón con setas oscuras.

Genitalia (figs. 59-61), castaño claro. Dististilo
dorsal grande.

Material estudiado: 2 3. Holotipo N* 12351 de
ARGENTINA, Neuquén, P.N. Lanín, Pucará,
IV-1972. Parátipo de CHILE, Osorno, Puca-
trihue, I-1980.

Observación: el macho de Chile es más pequeño
—ala 2.2. mm— y el mesonoto carece de ban-
das nítidas.

Mycetophila temucoensis sp. n.
(figs. 62-65).

En esta especie se encuentran dos formas con
adultos algo diferentes y genitalias muy se-
mejantes.

I. Forma típica. (figs. 62-63).

MACHO. Longitud del ala 2.3. mm.

Palpos castaño claros. Antenas con los seg-
mentos basales amarillentos. Mesonoto ma-
rrón claro; setas cortas marrones con reflejos
dorados. Escutelo con base marrón y ancho
borde más claro. Postnoto y pleuras marrones.
Patas amarillentas; fémures IH-I11 algo oscu-
recidos en borde dorsal y ápice. Tibia II con 2
setas ant., 4 dors. (basal corta), 3 post. (distal
larga) y 2 ventrales (la distal corta); T. 111 con
5 ant., 5 dors. y 3 post. Ala poco manchada, la
central pequeña, nítida; la distal atenuada;
horquilla post. poco distal a la anterior. Balan-
cines amarillentos. Abdomen marrón negro,
setas cortas doradas.

Genttalsa (figs. 62-63). Pequeña, castaño claro.
Edeago del tipo M. neoconifera Duret (VIII:
fig. 15).

Material estudiado: 2 3. Holótipo N* 11287 de
ARGENTINA, Neuquén, Pucará, XI-1971 y
parátipo N” 14254 de CHILE, Cautín, W. de
Temuco, La Selva, XII-1981.

Observaciones: Por su aspecto general y genita-
lia provisoriamente colocamos a esta sp. n. en

189

el grupo clavigera a pesar de sus dos setas
ventrales en la tibia media. El macho de La
Selva presenta un mesonoto marrón unifor-
me; patas claras; tibia 11 con 1 seta ventral y 1
póstero-ventral. Alas claras (2.1 mm), mancha
central pequeña y débil; la distal poco visible.

II. Forma atípica (figs. 64-65). El macho

N* 12745 se incluye, por ahora, en esta sp. n...
por tener una genitalia muy semejante, pero

presenta caracteres que originan ciertas

dudas.

MACHO, longitud del ala 2.4 mm; mesonoto

amarillento con leve tinte castaño y tres ban-

das centrales marrones bien nítidas, setas cor-

tas doradas. Patas amarillo claro; tibia Il con 1

seta ventral; T. III con 5 ant., 4 dors. y 4 post
(mayor la distal). Ala clara, mancha central
poco nítida, distal apenas insinuada. Proceden-
cia. ARGENTINA, Neuquén, Pucará, 1Il-
1972.

Mycetophaila neoclauigera sp. n.
(figs. 66-67).

Especie muy próxima a M. clavigera, forma b) -
(fig. 3).

MACHO. Longitud del ala 2.8 mm.

Color general muy oscuro (tórax, patas y ba-
lancines). Tibia II con 2 setas ant., 4 dors. 4
post., 1 ventral y 1 póstero-ventral; T. MI con
5 ant., 4 dors. y 4 post cortas. Ala con suave
tinte castaño; mancha central poco nítida; dis-
tal atenuada; horquilla posterior corta, mide
casi la mitad de su tallo.

Genitalia (figs. 66-67). Castaño claro. Edeago
ovalado.

Material estudiado: el macho holótipo N* 11435
de CHILE, Magallanes, Ultima Esperanza,
Monte Alto, XI-1975. Un segundo macho, al-
go deteriorado, N” 11247 de Pucará, AR-
GENTINA, lo colocamos momentáneamente
en esta Sp. n. por tener igual la genitalia, pero
su color es menos oscuro, la horquilla poste-
rior un poco más larga y la tibia II, al parecer,
sólo tiene una seta ventral.

Mycetophila magallanensis sp. n.
(figs. 68-71).

MACHO. Longitud del ala 2.6-2.7 mm.
Cabeza oscura. Antenas marrones en la base,

190

el resto oscuro. Mesonoto marrón oscuro a
negruzco, sin bandas, bordes anterior y latera-
les marrones y con escaso polen ceniciento;
setas cortas con reflejos dorados. Escutelo,
postnoto y pleuras marrón claro. Patas amari-
llentas con tinte castaño difuso; fémures algo
oscurecidos en los bordes; tibia 11 con 2 setas
ant., 4 dors., 3 post. (mayor la distal) y 1 ven-
tral; T. III con 5 ant., 4 dors. y 3 post. Alas
poco manchadas; la central pequeña, nítida; la
distal castaño muy claro, uniforme; celda cos-
tal con tinte amarillento; horquilla posterior
poco más distal que M. conafera. Balancines
oscuros. Abdomen oscuro, setas cortas do-
radas.

Genttalia (figs. 68-69). Edeago semejante a M.
chinguensis Duret, VIII: fig. 46.

Material estudiado: 4 3. Holótipo N? 12480 y 1
3 de ARGENTINA, Neuquén, P.N. Lanín,
Pucará, VII1-1973 y X-1971. CHILE, Maga-
llanes, Ultima Esperanza, Monte Alto, XI-
1975, 2 d.

Observación: Los dos ejemplares de Monte Alto
son aún más oscuros, con tórax marrón negro,
patas castaño oscuro y uno de ellos tiene la
horquilla posterior algo más distal. Serían una
forma oscura de la sp. n. Genitalia (figs. 70-71),
marrón claro.

Mycetophila 1barragrassol sp. n.
(figs. 72-76).

Color general oscuro, patas claras, alas poco
manchadas.

MACHO. Longitud del ala 2-2.6 mm.
Cabeza oscura. Tórax marrón a marrón oscu-
ro; mesonoto generalmente sin bandas níti-
das; bordes anterior y laterales poco más cla-
ros, algo polinosos. Patas desde amarillo claro
hasta amarillentas con suave tinte castaño; fé-
mures I-II I algo oscurecidos en el borde infe-
rior y ápice. Tibia II con 2 setas ant., 4 dors., 3
post. (mayor la distal) y 1 ventral; T. 1 con 5
ant., 4 dors. y 2 post. cortas. Alas con un débil
tinte castaño; mancha central pequeña, nítida;
distal muy atenuada, a veces ausente; horqui-
lla posterior poco más distal que M. comfera.
Balancines castaño claro. Abdomen oscuro.
Genitalra (figs. 72-76), castaño muy claro.
Material estudiado: 11 3. Holótipo N? 8638 y 8

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

gd de ARGENTINA, Neuquén, Pucará, III-
1972 a VIIM1-1973. CHILE, Malleco, cordillera
Nahuelbuta, 1300 m, 1-1982, 1 3. Magalla-
nes, Ultima Esperanza, río Santa María, I-
1982, 1 g (Cekalovié col.). Especie dedicada a
un viejo amigo el entomólogo Addalberto Iba-
rra Grasso.

Mycetophila clydeae sp. n.
(figs. 77-78).

Color general marrón claro, patas amarillen-
tas, ala con pequeña mancha central.
MACHO. Longitud del ala 2.5. mm.

Cabeza: Clípeo marrón oscuro; palpos marro-
nes; Occipucio marrón negro, setas con re-
flejos bronceados. Antenas oscuras, poco más
claras en la base. Tórax: Propleura y pronoto
castaño amarillento. Mesonoto marrón claro
en el centro, con tres bandas insinuadas, ángu-
los ántero-laterales y bandas laterales hasta el
escutelo amarillentos con débil tinte castaño;
setas cortas oscuras. Escutelo marrón en la
base, con bordes claros; postnoto marrón cla-
ro; pleuras marrones. Patas amarillentas; coxa
I con setas cortas marrones. Tibia II con 2
setas ant., 4 dors., 4 post. y 1 ventral; T. II con
5 ant., 4 dors. y 3 post. cortas. Alas claras, con
suave tinte castaño uniforme; mancha central
pequeña, la distal ausente; horquilla posterior
poco más distal que M. con2fera. Balancines
con cabezuela marrón. Abdomen oscuro con
setas marrones.

Genitalia (figs. 77-78). Castaño claro; edeago
semejante a M. mapuches: sp. nm. (fig. 39).
Material estudiado: el macho holotipo N? 13624
de CHILE, Osorno, Pucatrihue, 1700 m, II-
1980. Esta sp. n. la dedicamos a la entomóloga
Clyde Delia Olivera.

Mycetophila neoparapicalis sp. n.
(figs. 79-86).

Semejante a M. parapicalis Freeman, 1954
(n.n. M. apicalas Fr., 1951).

MACHO. Longitud del ala 2.8-3.2 mm.
Cabeza oscura; occipucio negruzco, algo poli-
noso, setas cortas oscuras con reflejos bron-
ceados. Antenas oscuras, segmentos II y base
de III poco más claros. Tórax: Mesonoto casi
negro, uniforme o con bandas insinuadas, án-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

gulos ántero-laterales hasta el escutelo con
una leve faja de polen ceniciento; pilosidad
corta con reflejos dorados. Resto del tórax
marrón oscuro, algo polinoso. Patas amarillas,
con débil tinte castaño; coxas algo oscurecidas
en las bases, más en C. III; Tibia Il con 2 setas
ant., 5 dors. (basal corta), 4 post. (mayor la
distal) y 1 ventral; T. II con 5 ant., 5 dors.
(basal corta) y 6 post. cortas e iguales. Alas
claras, o con un débil tinte castaño uniforme;
mancha central pequeña; horquilla posterior
nítidamente distal a la anterior, reduciéndose
a veces a casi la mitad del tallo; algunas macro-
triquias cerca del borde alar. Balancines ama-
rillo pálido. Abdomen negro, con pelos cortos
dorados.

Genitalsa (figs. 79-86), marrón claro.
Materal estudiado: 15 3. Holotipo N* 13554 de
CHILE, Ñuble, cordillera Chillán, Shangri-la,
1600 m, 1-1979. Valparaíso, La Vizcacha,
1800 m, XII-1982, 6 d. Santiago, Til-Til, La
Dormida, XI-1982. 2 gd. Osorno, Puyehue,
Aguas Calientes, XII-1982, 1 d. Ñuble, cordi-
llera Chillán, Invernada, X-1970 (Ocare col.),
1 3. Coquimbo, El Naranjo, Tilama, M1-1967,
3 3 (Molina col.). Magallanes, Ultima Espe-
ranza, Laguna Amarga, 11-1971, 1 g (Cekalo-
vic col.).

Nora. M. parapicalis Fr. 1954 fue descrita en
base a 7 machos y 12 hembras de tres localida-
des de Argentina y Chile. Teóricamente sería
común, sin embargo, no hemos podido hallar
un ejemplar cuya genitalia y caracteres del
adulto concuerden con los datos de Freeman.
Es posible que su dibujo (1951, fig. 250) obte-
nido con una genitalia no disecada, nos haya
confundido, pero sólo el examen de su holoti-
po podrá aclarar este punto. Á su vez nuestras
genitalias muestran frecuentes variaciones,
sobre todo el dististilo ventral, cuyos tres bas-
tones cambian a menudo su ubicación, incluso
en el mismo ejemplar. Para comparación da-
mos los datos esenciales del macho de M. para-
picalis (1951: pág. 124).

Ala de 2.75-3.5 mm, clara, hialina, con una
ligera mancha sobre r-m; horquilla posterior
poco distal a la anterior; sin macrotriquias en
la membrana. Balancines oscuros. Mesonoto

191

marrón, a veces marrón rojizo. Patas amarl-
llas. T. II con 2 setas ant., 4 dors., 1 ventral, 1
larga y 3 cortas post.; T. III con 5 ant., 5 dors.
y 3 post.

Discusión: M. neoparafpicalas sp. n. se separa por
su mesonoto muy oscuro, polinoso lateral-
mente; horquilla posterior nítidamente distal
y algunas macrotriquias cerca del borde alar;
balancines claros.

Genitalia: dististilo dorsal con lóbulo piloso dis-
tal corto; lóbulo piloso interno grande, redon-
deado y piloso; borde externo con una eleva-
ción triangular en su ápice y cara externa bien
pilosa; dististilo ventral con un bastón en el
ápice de su prolongación interna.

CLAVE

Advertencia. Se presenta una clave, artificial y
provisoria, que sólo pretende orientar al in-
vestigador de un grupo que requiere aun estu-
dios más amplios. Para interpretarla es indis-
pensable consultar la primera parte de esta
revisión (Parte VIII), cuyos dibujos son bási-
cos. Al ordenar en una clave este conjunto
difícil, por la cantidad y uniformidad de sus
especies y sus variaciones de coloración, se ha
recurrido básicamente a los elementos de la
genitalia disecada. En la clave se han incluido
las 41 especies del grupo clavigera-comfera y
sus asociadas, las que por ahora se ubican en el
dilema 48 de Freeman. Se aclara que varias
especies presentan en sus alas sólo la mancha
central, por lo que su lugar lógico sería el
dilema 45, junto a M. parapicalis. Pero ésto
exigiría incorporar a la clave otras 16 sp. con
genitalias extrañas al grupo que se estudia
aquí. Su colocación correcta se dará en una
clave general para todas las Mycetophila de la
Patagonia.

Para separar los taxones se ha utilizado con
frecuencia la forma del edeago: A) tipo conafe-
ra (VIII: fig. 3); B) tipo clavigera (VIII: fig. 6) y
C) tipo intermedio, con edeagos de otras for-
mas. Como orientación previa damos la tra-
ducción de los dilemas 44 al 48 de la clave de
Freeman (1951: pág. 101).

192

44

45

46

47

48

5a

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Tibia media con una seta ventral generalmente bastante larga y colocada en el
A A A A A a o Oo
Tibia media con por lo menos dos setas ventrales .......oooooooooccoomm....
Apice del ala clara, sin mancha y sin una banda oscura preapical ............
A e ld parapicalis Fr. 54 (n.n. apicalis Fr. 51)
Están presentes una banda preapical o una sombra apical ..................
Mancha central extendida hasta alcanzar la horquilla posterior ..............

Mancha central no extendida hasta la horquilla posterior ...................
Manchas alares en forma de una sombra apical y una banda subapical .......
o re oa os ATI As pectinata Fr. 51
Manchas alares en forma de una sombra apical solamente ..................
Longitud del ala más que 2.5 MM ......o.oo.ooocccccccoo oo consfera Fr. 51
Longitud del ala menos que 2.5 MM .....o.o.o...oooooooooo.. clavigera Fr. 51

Clave provisoria para los machos del grupo
Mycetophila clavigera - M. confera y especies asociadas

Dististilo ventral con la prolongación basal interna larga, más o menos dos veces su
ancho; ano: ¿Eidos lt da > q ARTIE ROM A LOTO SIE YAA OA
Dististilo ventral con la prolongación más corta O ausente .......o.o.....o.oo.o..
La base del dististilo ventral y su prolongación interna forman un ángulo más o
menos recto, con bordes LECLOSipeooo oc ono en o E ao e IR
La base del dististilo ventral y su prolongación interna forman un ángulo más
agudo, con bordes cuUrvados! mío. Lado sind DEP AS
Dististilo ventral con base cilíndrica, larga y delgada .......................
Dististilo ventral en forma de un grueso cono truncado; prolongación basal
interna gruesa, con un bastón apical. Dististilo dorsal con un lóbulo piloso interno
grande y triangular; lóbulo membranoso apical delgado, en forma de clava (VIII:
II O OS M. triappendiculata Duret. 1985
Prolongación interna con un bastón apical (VIII: figs. 11-12) ...............
aca di rogadoris +. ¡Oo 3: M. pseudoconifera Duret. 1985
Prolongación interna con un bastón cerca de la base (VIII: figs. 13-15) ......
dbispesidon: dida e duna > + ¡2 SEMIEEL M. neoconifera Duret. 1985
Dististilo ventral con una clava en el extremo de la prolongación interna, un
bastón en el centro del borde interno y dos o tres bastones cortos apicales (VIII:
figs. 1-3). Alas con manchas nítidas; balancines A A
Dististilo ventral con una clava y dos bastones ......ooooooooooorrrrrr oro...
Dististilo dorsal sin una apófisis cónica en el ápice del borde externo (VII: fig. 1)
de ade ett ore SA -- aru or bd e M. conifera Fr. 1951

Dististilo dorsal con una apófisis cónica en el ápice del borde externo (fig. 1)

able al tr elias: ROA EE: M. conifera, var. a)
Dististilo ventral con base cilíndrica, ápice grueso y piloso, con un bastón y una
gruesa seta subapicales (VIII: figs. 16-18). Balancines amarillentos ..........

A E o A: M. paraconifera Duret. 1985

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5a

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

SA ==

o. =

dE

10. =

¡Ya A

la.

eS

Dististilo ventral con base cónica, ápice estrechado, poco piloso, con dos pequeños
bastones curvados subapicales (VIII: figs. 21-23). Balancines oscuros ........
O o O O M. nahuelhuapi Duret. 1985
Edeago del tipo clavigera (VIII: fig. 6) o muy semejante ....ooooooooocoo oo...
Edeagojditerenter o... aseado aa ej
Dististilo ventral con la prolongación basal interna presente ................
Dististilo ventral sin la prolongación basal interMa .........oooo.oooooooccco ooo.
Prolongación basal interna corta, más ancha que larga ........oooooo..o.o..o..
Brolongación basalintena di A ao
Prolongación basal insinuada, poco nítida, con bastones cortos (VIII: fig. 5) o

poco menores tala cda M. clavigera Fr. 1951
Rrolongación basalcorta pero md
Edeago engrosado en la parte distal (VIII: fig. 7) ....... M. clavigera forma a)

Edecagomormal ti o diia lo o oca al
Dististilo ventral grande, cilindroide, con ápice grueso y piloso (fig. 3) .......
A el Tratan a o a M. clavigera forma b)
Dististilo ventral chico, cónico, ápice estrechado y poco piloso (fig. 4) ........
ARA A de a od td o de e M. clawgera forma c)
Prolongación basal interna saliente, tan larga como ancha. Dististilo ventral cóni-
co. Dististilo dorsal con una pequeña apófisis triangular cerca del ápice del borde
externo; lóbulo piloso interno grande (VIII: figs. 19-20) ...................
A do dl ie y la M. pseudoclavigera Duret. 1985
Erolongación basal terna diterente a e o O.
Dististilo dorsal con lóbulo piloso interno grande y saliente; lóbulo piloso distal
¡OA E
Dististilo dorsal con un lóbulo piloso interno Menor ....oococccococooooccoo.
Dististilo ventral con tres bastones largos y delgados (Fig. 6); edeago (fig. 7) ..
ADS DEI EI IM POLA IIA CDI 0206, M. araucana Lane, 1962
Dististilo ventral con dos bastones largos y el subapical menor (figs. 8-11) ....
SS E M. araucana forma atipica
Dististilo dorsal con un refuerzo quitinoso en el borde externo y una punta o
tuberculosa pic A O A O,
DisustlodorsalSi punta oc
Macho generalmente claro. Genitalia pequeña, poco pilosa; dististilo dorsal con
una punta cónica en el ápice del borde externo; dististilo ventral cónico, con
bastones cortos y delgados (figs. 12-13) .. M. pseudoaraucana sp. n. forma clara
Macho generalmente oscuro. Genitalia mayor, bien pilosa; dististilo dorsal con un

- tubérculo en el ápice del borde externo; dististilo ventral cilindroide, con bastones

Dar

largosi(figs: LASI5) Y a o ol M. pseudoaraucana sp.n. forma oscura
Edeago ensanchado en la parte distal; tergito IX grande, cerco adelgazado en el
tercio distal (figs. 16-18). Dististilo dorsal semejante a M. clavigera (VII: fig. 4)
sd o de M. yamanas!: sp. n.
Edeago y tergito IX de aspecto y tamaño normales; dististilo ventral con una clava
(ovalada ele alone > >
Macho generalmente claro. Dististilo ventral cónico, poco piloso (figs. 19-22)

A eos UA DA AAN M. variable sp. n. s. str. forma clara
Macho generalmente oscuro. Dististilo ventral ancho, grueso, piloso (figs. 23-25)
a o UC o M. vanable sp. n. forma oscura
Genitalia (gs 202 llo alado os M. vantable sp. n. forma intermedia

193

9b

9c

11

lla
12

12a
13

13a

194 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

14 — Dististilo dorsal bilobulado (III: figs. 30-32) .......... M. pirani Duret. 1980.
— Dististilo dorsal simple, corto y gruesO ......ooooooocorrorocrrrrrrrrrrr o 15
15 — Dististilo dorsal con una punta en el ápice del borde externo; lóbulo piloso interno
pequeño y unido al lóbulo piloso distal (fig. 29) ........... M. indigena sp. n.
— Dististilo dorsal sin punta. A SE 16
16 — Dististilo ventral con tres hojuelas; dististilo dorsal con lóbulo piloso interno
pequeño y central (fig. 30) ...o.oooommrmeoro correr M. indiana sp. n.
— Dististilo ventral con una hojuela, varios bastones cortos y setas gruesas; dististilo
dorsal con un pliegue distal (figs. 31-33) ................. M. puelches: sp. n.
17 — Edeago del tipo conifera (VIII: fig. 3) o muy semejante .....oooooocooooo.... 18
—MEdEagorditerente rr ar a dro dsc DS IE DO 26
18 — Dististilo ventral con la prolongación interna delgada, pero bien desarrollada 19
— Dististilo ventral con la prolongación interna corta, poco visible o apenas insinua-
O o A o Lo. 23
19 — Dististilo ventral con cuatro bastones, dos largos en la prolongación interna y dos
cortos subapicales; dististilo dorsal con el lóbulo piloso interno largo y delgado
Mass a e a a M.pinarensis sp. n.
Se Dististilo. ventral diterente a iaa Se AR 20
20 — Dististilo ventral con una hoja alargada o bastón ancho colocada cerca de la base de
la prolongación interna; borde interno con tres bastones cortos, uno central y dos
distales (VII: Gigi O rad poe sr ra neo ss M. decarlos Duret, 1983
— Dististilo ventral con tres bastones O varillaS ........ooooooooooooooommrm momo. 21
21 — Dististilo ventral pequeño, con base corta, delgada, poco pilosa; prolongación

interna con una varilla larga ubicada cerca de su base (VIII: figs. 32-34) .....
E RRA RSE DEIS E APRA ex de M. cordillerana Duret. 1985

22 — Dististilo ventral con tres bastones cortos y gruesos, uno en la prolongación
interna y dos subapicales; dististilo dorsal con ápice inferior interno grande, de
aspecto normal; lóbulo piloso interno grande, ancho. Tibia II con 1 seta ventral
(MESA) A e a M. mapuches: sp. n.

— Dististilo ventral con una varilla larga: en la prolongación interna y dos subapicales
poco menores; dististilo dorsal con ápice inferior interno pequeño y corto; lóbulo
piloso interno chico, cilindroide. Tibia II con dos setas ventrales............. 22a

22a — Macho oscuro; balancines oscuros; edeago del tipo conifera; genitalia (figs. 40-42)

ES Ae a rr or da M.biformata sp. n. s. str. forma oscura

— Macho claro o amarillento, balancines idem; edeago ancho, con cabezuela alarga-
da (ligs: 43 4d) bso sido M. biformata sp. n. forma clara

23 — Dististilo ventral grande, base cónica alargada y ápice estrecho; prolongación
interna redondeada, con una hojuela subapical corta y ancha, un bastón corto
central y dos cortos subapicales; dististilo dorsal con lóbulo piloso interno grande,

redondeado (TE gs20 2 NAAA ERA AS. M. pena: Duret, 1980
SS OEA CO A A 24
24 — Prolongación interna ancha, con una clava gruesa; borde interno con dos bastones

apicales o subapicales. Dististilo dorsal con lóbulo membranoso apical largo, en
forma de lengua; borde interno con una apófisis cónica en el ápice; lóbulo piloso

interno pequeno (figs. 1010) caia acia esos M. neomapuches: sp.n.
— Prolongación interna cónica, poco diferenciada del resto del dististilo; dististilo
dorsal con lóbulo piloso interno grande .......oooocccccoccccoocooccoo 25

25 — Borde interno del dististilo ventral con un bastón grueso, oblicuo y otro pequeño

pp

Bol.

26 —

2

28 —

ZAS TAN

30. =

31. ll

DA ==

TÍ) ==

SA

E

Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

subapical. Dististilo dorsal normal; lóbulo piloso distal muy corto (V: figs. 45-47)
A O A M. pseudopena: Dur. 1981
Dististilo ventral con una hojuela subapical alargada y aguzada y un bastón corto y
una seta gruesa apicales. Dististilo dorsal con un lóbulo membranoso apical largo,
en forma de lengua; borde externo con una apófisis cónica delgada en su ápice;
lóbulo piloso distal normal (VII: figs. 41-43)..... M. neuquinensis Duret, 1985
Edeagos de forma y tamaño diferentes al grupo clavigera-comfera ............
Edeagos ovalados u ovoides, semejantes a los del grupo citado. ..............
Edeago grueso, con la cabeza muy grande. Dististilo dorsal con una punta cónica
en el ápice del borde externo; lóbulo membranoso apical grande (figs. 50-52)
ROS IN O M. macrocephala sp. n.
Edeagolconila,cabezuela de tamañomaturad E A A a
Dististilo dorsal con un refuerzo quitinoso en la parte distal del borde externo y
una apófisis cónica en el ápice; lóbulo piloso distal corto; lóbulo piloso interno
central y alargado. Dististilo ventral con una prolongación interna corta, delgada,
con una clava apical y dos bastones delgados, apical y subapical (Figs. 53-55)...
LAS oogia ir da dl A rada: e yl M. scourfield: sp. n.
Dististilo dorsal grande, sin refuerzo quitinoso ni apófisis apical. Dististilo ventral
A TI A A A A o E 5
Dististilo dorsal con ápice inferior interno grueso; lóbulo piloso distal corto;
lóbulo piloso interno grande, central, bien saliente. Dististilo ventral con escasas
setas apicales. Edeago grande, ovalado (figs. 56-58) .......... M. pucara sp. n.
Dististilo dorsal con ápice inferior delgado; lóbulo piloso distal grueso; lóbulo
piloso interno menor, central; lóbulo membranoso apical grande. Dististilo ven-
tral con algunas setas apicales. Edeago grande, no ovalado (figs. 59-61) ......
A dd Pe ea M. argentinensis Sp. N.
Dististilo ventral de base cónica, poco pilosa; prolongación basal interna bien
saliente, con un grueso bastón subapical; borde interno con una seta gruesa
central y otra menor subapical. Dististilo dorsal con lóbulo piloso interno grande,
saliente (VIII: figs. 28-29). Edeago semejante a M. chinguensis (VII: fig. 46). .
M. pucarani Duret, 1985

PP... o oros... o... o... +... 0... os... os.

Prolongación basal interna corta O ausente ......o.o.oo.oooooooccoccoocoooo
Prolongación basal interna corta, pero nítida .........oooo.ooccccococoooo o...
Prolongaciónibasallausenter tarados to AE lA AENA
Prolongación: basal'interna delgada... ooo. A
Erolongación basal internasruesa a o
Genitalia PEQUEÑA e o e io
Genitaliaide tamano no A de oe E,
Tibia media con dos setas ventrales; mesonoto marrón uniforme. Genitalia (figs.
62-63). Edeago semejante a M. neocomifera (VIII: fig. 15). ....ooooooooooo.oo...
iS A A M. temucoensis sp. n., forma tipica
Tibia II con una seta ventral; mesonoto amarillento con tres bandas centrales
marrones, nítidas. Genitalia (figs. 64-65) ...... M. temucoensis sp. n. forma atipica
Dististilo ventral grande, con tres varillas largas. Dististilo dorsal ancho; lóbulo
piloso distal corto; lóbulo piloso interno grande, central (VIII: figs. 24-27) ...
E A O TL A TS M. indecisa Duret, 1985
Dististilo ventral corto, grueso, con tres bastones. Dististilo dorsal con lóbulo
piloso distal largo y delgado; lóbulo piloso interno, pequeño, cilindroide (VIII:
SD e o a M. chilenensis Duret, 1985
Tibia media con dos setas ventrales. Dististilo ventral grande, base cilindroide;

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Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

prolongación basal interna poco más ancha que larga. Edeago ovalado; (figs.
66-67). Dististilo dorsal semejante a M. clavigera (VIII: fig. 4)................
AOL DONES LARA $ DIGUIAIS EN AUS e ROA IAE M. neoclavigera sp. n.

Tibia"media"con una seta ventral UAM ME MOON O + 36
Dististilo dorsal con lóbulo membranoso apical en forma de lengua .......... 36a
Dististilo dorsal con lóbulo membranoso normal. Dististilo ventral chico ...... 37

Macho con patas amarillentas. Genitalia (figs. 68-69) .........0oooo.o.o........

O A AA OO M. magallanensis sp. n. forma tipica
Macho con coloración general oscura. Genitalia (figs. 70-71) ................

E UI A IN AA AI: M. magallanensis sp. n. forma oscura
Dististilo dorsal sin lóbulo piloso distal nítido; lóbulo piloso interno pequeño,
central (VIII: figs. 30-31). Edeago tipo M. chinguensis (VIII: fig. 46) .........
OI ERRAL IISE 13 UOC LEO ONCE Ro LES M. hernan: Duret, 1985
Dististilo dorsal con lóbulo piloso distal................oooooocooocooocccoo.. 38
Dististilo dorsal de aspecto normal; lóbulo piloso interno pequeño, cercano a la
base del lóbulo piloso distal (VITI: figs. 38-40) ... M. araucanensis Duret, 1985
Dististilo dorsal con un pliegue quitinoso en el área superior y externa; lóbulo
piloso interno grande, central; lóbulo piloso distal generalmente grueso (figs.
TELAS eto SA AA O DAMAS IIARO NCAA ER ACTI E 38a
Dististilo ventral con dos bastones en el borde interno (figs. 73-75)...........
OR TG ASI O LOBA IOMA ATA M. ibarragrasso: sp. n. forma tipica
Dististilo ventral con tres bastones en el borde interno (fig. 76) ..............
ALS DuRICID! OOOO OA ON PNTE M. ibarragrasso! sp. n. forma atípica
Dististilo ventral cónico; ángulo interno redondeado con un bastón grueso suba-
pical; ápice estrechado, con dos bastones cortos y paralelos (figs. 77-78) ......

E OIR AA DE AS ITA UA, SUN estar M. clydeae sp. n.
Dististilo ventral con una clava y dos bastones gruesos o con tres clavas....... 40
Dististilo dorsal con un lóbulo membranoso apical largo, en forma de lengua;
ápice del borde externo prácticamente ausente. Dististilo ventral chico, borde
interno con una clava grande y gruesa subapical interna y dos bastones gruesos y
cortos distales (VIII: figs. 44-46) ..........o.o.o..... M. chinguensis Duret, 1985
Lóbulo membranoso normal, generalmente plegado; área apical del borde exter-

no en forma de ángulo redondeado y con una apófisis corta y nítida. Dististilo
ventral cónico, base ensanchada, borde interno con tres clavas gruesas (VIII: figs.
A lado sica o Al de ras Jas M. axeli Duret, 1985

APENDICE

Nuevas localidades para Mycetophila descritas en la Parte VIII.

M. paracomifera Duret, 1985. CHILE, Llanquihue, 1-1980, 1 g.

M. hernan: Duret, 1985. ARGENTINA, Neuquén, P.N. Lanín, Pucará, 1-1972, 1 g. 1* cita para
Argentina. CHILE, Valparaíso, cerro La Vizcacha, X1I-1982, 1 g.

M. axela Duret, 1985. CHILE, Magallanes, Ultima Esperanza, Monte Alto, X-1975, 1 g.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 197

Lámina I. Mycetophila conifera Freeman, 1951, variedad a): 1, dististilos dorsal (d) y ventral (v), cara externa. M. clavigera
Freeman, 1951, s. str.: 2, dististilo ventral (15945); forma b): 3, dististilo ventral, semiesquemático, parcial (12242); forma
c): 4, dististilo ventral (11156). M. araucana Lane, 1962: 5, dististilo dorsal, cara interna; 6, idem, ventral; 7, edeago, forma
atipica: 8, dististilo dorsal; 8a., idem, parcial; 9, idem, cara interna (15852); 9a., lóbulo piloso interno aislado (15222).

198 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Lámina II. Mycetophila araucana Lane, 1962, forma atípica: 10, dististilo ventral (11577); 11, idem (15852). M. pseudoarauca-
na sp. n., forma clara (típica): 12, dististilo dorsal; 13, idem, ventral; forma oscura: 14, dististilo dorsal; 15, idem, ventral
(11992). M. yamanasi sp. n.: 16, dististilo ventral; 17, edeago; 18, tergito IX, cerco. M. variable sp. n., forma clara (típica): 19,
dististilo dorsal, ápice; 20, idem, ventral (12815); 21, idem (12748), 22, edeago (12772).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 199

Lámina III. Mycetophila variable sp. n., forma oscura: 23, dististilo dorsal; 24, idem, ventral; 25, edeago (13242); forma
intermedia: 26, dististilo dorsal; 27, idem, ventral, parcial, semiesquemático; 28, idem, ventral (7794). M. indiana sp.n.: 29,
dististilos dorsal y ventral, cara externa; a)- lóbulos piloso distal e interno unidos. M. indigena sp. n.: 30, dististilos dorsal y
ventral, cara externa; a)- lóbulo piloso distal; b)- hojuelas del dististilo ventral.

200 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

PS IN AN
y» A

q
» AS
2 ey
o

Lámina IV. M. puelchesi sp. n.: 31, dististilo dorsal; 32, idem, ventral (8344); 33, idem, variación (Ch. 195). M. pinarensis sp.
n.: 34, dististilo dorsal; 35, idem, ventral; 36, edeago. M. mapuches: sp. n.: 37, dististilo dorsal; 38, idem, ventral; 39,
edeago. M. biformata sp. n., forma clara (atípica): 43, dististilo dorsal, ápice: 44, edeago (13821).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 201

Lámina V. Mycetophila biformata sp. n., forma oscura (típica): 40, dististilo dorsal; 41, idem, ventral; 42, edeago. M.
neomapuches: sp. n.: 45, dististilo dorsal; 46, idem, ventral (11231); a)- clava (12889); 47, edeago (11231); 48, dististilo
ventral y 49, edeago (13537). M. macrocephala sp. n.: 50, dististilo dorsal; 51, idem, ventral; 52, edeago.

902 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985..

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A

Lámina VI. Mycetophila scourfielda sp. n.: 53, dististilo dorsal; 54, idem, ventral; 55, edeago. M. pucara sp. n.: 56, dististilo
dorsal; 57, idem, ventral; 58, edeago. M. argentinensis sp. n.: 59, dististilo dorsal; 60, idem, ventral; 61, edeago. M.
temucoensis sp.n., forma típica: 62, dististilo dorsal; 63, idem, ventral (11287); forma atípica: 64, dististilo dorsal; 65, idem,

ventral (12745)

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 203

Lámina VII. Mycetophila neoclavigera sp. n.: 66, dististilo dorsal; 67, edeago. Mycetophila magallanensis sp. n., forma típica: 68,
dististilo dorsal; 69, idem, ventral (12480); forma oscura: 70, dististilo dorsal; 71, idem, ventral (11556). M. ¿barragrasso1 sp.
n., forma típica: 72, dististilo dorsal, parcial, cara interna; 73, idem, cara externa; 74, idem, ventral; 75, edeago; a)- ápice
del edeago N” 15218; forma atípica: 76, dististilo dorsal (la varilla vecina a la clava es poco más delgada).

204 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Lámina VII. Mycetophila clydeae sp. n.: 77, dististilo dorsal; 78, idem, ventral. M. neoparapicalis sp. n.: 79, dististilo dorsal;
80-81, idem, ventral; 82, edeago (holótipo); 83, dististilo dorsal; 84, idem, ventral; 85, edeago, no disecado (parásito
9666); 86, ápice del dististilo dorsal, cara interna, 87, idem, ventral (Ch. 489).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

205

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Lío JA

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la eel 4 MAC TERAA Y tail + h= 12
cl 308 vila IRA das XT. ame! i a lie 190 A cd pus,

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E bad, indpeoidsis cese ia LILES ds a cti pene Da opi AY AA

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 207-212, 1985.

OBSERVACIONES EN TERRENO Y ESTUDIOS /N VITRO
DE LA FASE CONCHOCELIS DE PORPHYRA COLUMBINA MONTAGNE
(ALGAE, RHODOPHYTA)

Field observations and 2n vitro studies of the conchocelis
phase of Porphyra columbina Montagne (Algae, Rhodophyta)

MATAMALA, F., MARIA; ENRIQUE MARTINEZ M.;
IVONNE ETCHEPARE R. Y HECTOR ROMO D.*

RESUMEN
Se describe la distribución y abundancia de la fase concho-
celis de Porphyra columbina Montagne en organismos con
exoesqueleto calcáreo de la zona intermareal de Bahía
Coliumo. Se encontró que la abundancia de conchocelis
guarda una relación directa con la abundancia de estos
organismos.

En laboratorio, se comprobó que no hay selectividad
de la fase conchocelis al ofrecerle tres tipos de sustratos
diferentes, representados por conchas de Chlamys (Argo-
pecten) purpuratus Lamarck, 1819; Tagelus dombei Lamark,
1818 y Ostrea chilensis Philippi, 1845.

En el desarrollo in vitro de la fase conchocelis de P.
columbina y Bangia fuscopurpurea, se determinó que tanto el
grosor como el largo de los filamentos de conchocelis de
Porphyra son significativamente mayores que los de
Bangia.

INTRODUCCION

Porphyra columbina Montagne es uno de los
recursos algológicos de la VIII Región, cuyo
uso principal es el consumo directo por la
población.

*Departamento de Oceanología Universidad de Concep-
ción.

ABSTRACT

Distribution and abundance of conchocelis phase of
Porphyra columbina Montagne in organisms with
calcareous exoskeleton from intertidal zone of Coliumo
Bay is described. It was found that abundance of
conchocelis phase is directly related with abundance of
these organisms.

Laboratory experiments revealed that there was no
selectivity of conchocelis phase for the three different
types of substratum offered; shells of Chlamys (Argopecten)
purpuratus Lamark, 1819; Tagelus dombei Lamark, 1818;
and Ostrea chilensis Philippi, 1845.

In vitro development of conchocelis phase of P.
columbina and Bangia fuscopurpurea showed that both
thinkness and length of filaments of conchocelis of
Porphyra were greater than of Bangia.

Keywords: Conchocelis phase. Porphyra columbina. Bangia
fuscopurpurea. Distribution. /n vitro studies.

El ciclo de vida de esta especie ha sido des-
crito por Etcheverry y Collantes (1977) y cons-
ta de una fase foliosa gametófita monoica y
una fase esporófita microscópica denominada
conchocelis (Drew, 1954) que vive en la matriz
calcárea de conchas de variadas especies de
invertebrados de la zona intermareal y subma-
real (Clokie et al., 1981).

208

En Bahía Coliumo, la población de gameto-
fitos de Porphyra columbina habita los niveles
superiores de la zona intermareal y presenta
un nítido comportamiento estacional. Las
frondas son abundantes desde fines de otoño
hasta comienzos de primavera. Después de
haber liberado sus carposporas, las frondas
entran en una etapa de senescencia hasta su
desaparición casi total a comienzos de verano.

Hasta el momento no existía información
sobre aspectos de distribución y abundancia
de la fase conchocelis en terreno. Debido a ello
los objetivos de este trabajo fueron: 1) describir
la distribución y abundancia de la fase concho-
celis de Porphyra columbina en organismos con
exoesqueleto calcáreo de la zona intermareal
de Bahía Coliumo; 11) determinar si existen
diferencias significativas en el desarrollo de la
fase conchocelis sobre tres substratos calcá-
reos diferentes, y 111) determinar si existen di-
ferencias morfológicas entre las fases concho-
celis de P. columbina y Bangia fuscopurpurea
(Dillwyn) Lyngbye cultivadas ¿n vatro.

MATERIALES Y METODOS

Los lugares de estudio estuvieron ubicados en
Bahía Coliumo (72%57'"W; 36%32'S) en las
áreas definidas como Candil, Bolones (Caleta
Villarrica) y Caleta Rere, respectivamente
(Fig. 1).

Para describir la distribución de invertebra-
dos con exoesqueleto calcáreo en la zona inter-

mareal y la distribución de la fase conchocelis:

en ellos, se determinó su abundancia ambien-
tal mediante mediciones de cobertura de in-
vertebrados en cuadrantes reticulados de 400
cm” con 100 puntos ordenados (Littler y Mu-
rray, 1975). Los cuadrantes se aplicaron al
sustrato en áreas adyacentes a las poblaciones
de Porphyra, en transectas perpendiculares a la
línea de costa. En cada cuadrante se recolectó
al azar entre tres y diez invertebrados (depen-
diendo de su densidad en el cuadrante) y en el
laboratorio cada concha fue trozada finamen-
te. Los trozos de conchas translúcidos se ob-
servaron al microscopio para determinar la
abundancia de la fase conchocelis en ellos.
Esta se estimó contando el número de fila-
mentos que cruzaban un diámetro de un cam-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

25

Se

fe Lingueral

Ptal Banderola

Bolones

Candil

Est. Biol.
1 Marina

BAHIA COLIUMO

DICHATO

Fig. 1. Area de estudio (e = localidades de muestreos:
Candil, Bolones y Caleta Rere).

po ocular de 400 aumentos, definiendo a prior:
cada uno de estos filamentos como un indivi-
duo. Se usó esta definición operacional, debi-
do a que el gran número de ramificaciones
que poseen las plantas de esta fase, imposibili-
tan la identificación de cada una de ellas en los
trozos de conchas. Las abundancias de inver-
tebrados en terreno y de fase conchocelis en
sus conchas se correlacionaron mediante el
test de Correlación de Rangos de Spearman

(Zar, 1975).

Para evaluar la selectividad por parte de
conchocelis ante distintos tipos de sustrato
calcáreo, se empleó trozos de conchas de Chla-
mys (A.) purpuratus, Ostrea chilensis y Tagelus
dombet. Se eligió conchas de estos organismos
(que no están presentes en el intermareal) co-
mo una forma de minimizar la ocurrencia na-
tural de la fase conchocelis en ellas. Además se
las sometió a un baño de hipoclorito de sodio
al 8% durante dos semanas para eliminar la
posible presencia de conchocelis y de otros

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

organismos. Porteriormente, los trozos de
conchas fueron lavados en agua potable du-
rante seis semanas, renovando el agua perió-
dicamente para eliminar el hipoclorito. El ma-
terial reproductivo utilizado fue frondas de
Porphyra de Caleta Rere, las cuales en el labo-
ratorio fueron lavadas en agua corriente para
eliminar epífitas y luego se les hizo esporular
en agua de mar filtrada. Después de dos días,
al comprobar esporulación, la solución fue re-
partida en tres cubetas de vidrio, conteniendo
cada una de ellas trozos de conchas de los 3
sustratos ensayados. Los cultivos se mantuvie-
ron durante 74 días, con un fotoperíodo de
12:12 (luz: obscuridad), en agua de mar filtra-
da (1 um), 14” temperatura y 36 JE m *seg”'
de iluminación. Se efectuaron controles perió-
dicos midiendo la abundancia de filamentos
de conchocelis en las conchas con el método
mencionado anteriormente. Al término del
período de cultivo se confrontaron las abun-
dancias promedio mediante un análisis de va-
rianza simple.

En la experiencia de desarrollo de la fase
conchocelis in vitro de B. fuscopurpurea y P.
columbina, se recolectaron frondas de ambas
especies en el intermareal de Bolones y Candil
(Caleta Villarrica, Dichato) y se hicieron espo-
rular previo lavado para eliminar epífitas.
Luego de la esporulación, las esporas se man-
tuvieron en placas petri con agua de mar fil-
trada (0.45 um) y enriquecida con N-NQs y
P-PO, en concentraciones de 1.7 mM y 98 M
respectivamente (McLachlan, 1973) y bajo

condiciones de fotoperíodo, temperatura y lu-

minosidad iguales a las de la experiencia ante-
rior.

Los resultados se basan en las observaciones

cualitativas y cuantitativas del desarrollo mor-
fológico (formas de crecimiento, diámetro de
espora, ancho y largo de filamento, respecti-
vamente).

Al término del período de cultivo, se con-
frontaron los promedios de largo y de ancho
de ambas fases conchocelis con un test de t.

RESULTADOS Y DISCUSION

Las especies con exoesqueleto calcáreo más
abundantes en la zona intermareal de las áreas

209

estudiadas fueron Chthamalus cirratus ( = Je-
hlius gilmore: Ross, 1971 sensu Newman 1979) y
Perumytilus purpuratus (Tabla 1). En el área de
Candil Littorina araucana presenta abundancia
similar a Perumytilus, sin embargo esta especie
se encuentra ausente en el área de Bolones; en
esta área la especie que sigue en importancia a
Chthamalus y Perumytilus fue Trimusculus peru-
vIanus.

La riqueza de especies de invertebrados fue
considerablemente mayor en el área de Can-
dil, contabilizándose diez especies habitantes
normales del intermareal y restos de conchas
de tres especies provenientes de otras zonas
ecológicas. Estas últimas también fueron in-
corporadas al muestreo, debido a que también
constituyeron sustrato para el desarrollo de la
fase conchocelis.

La abundancia de la fase conchocelis sobre
organismos vivos de la zona intermareal y res-
tos de conchas vacías de especies de la infauna
de fondos blandos (Ameghinomya antiqua) y del
sublitoral rocoso (Concholepas concholepas, Cho-
romytilus chorus y Megabalanus psittacus) se pre-'
senta en la Tabla 1. En esta tabla se presentan
además los rangos de Spearman asignados pa-
ra la abundancia ambiental de los organismos
y la abundancia de la fase conchocelis en ellos.

El análisis de los resultados entre la abun-
dancia de oferta ambiental de sustrato y abun-
dancia de fase conchocelis, indicó que, en am-
bas localidades la abundancia de ésta presenta
una correlación directa con la abundancia de
organismos con exoesqueleto calcáreo que di-
cha fase habita (r = 0.8378 para Playa de Bolo-
nes y r = 0.5179 para Playa de Candil, según el
test de Correlación de Rangos de Spearman,
con un nivel de significancia de P <= 0.05).

Las mayores abundancias de la fase con-
chocelis se observan preferentemente en or-
ganismos sésiles y en restos de conchas que
habrían estado expuestos a largos períodos a
la oferta de esporas en los niveles altos del
intermareal (conchas atrapadas en grietas).
Menores abundancias se observan en orga-
nismos móviles. Este hecho sugiere que la
abundancia de conchocelis estaría determina-
da por el tiempo de residencia del sustrato
calcáreo en la zona intermareal.

Otra posibilidad podría ser que la fase con-

210

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Tabla 1

Abundancia de organismos, de fase conchocelis y rangos de Spearman
asignados para las localidades de Candil y Bolones

CANDIL ; BOLONES
ESPECIES Abundancia ' R¿ Abundancia+ R;, Abundancia Ri Abundancia R,
Ambiental Conchocelis Ambiental Conchocelis
(% de cobertura) (% de cobertura)

Chthamalus cirratus 84.7 13 20.5 13 73.5 5 23.3 1)
Darwin, 1845

Perumytilus purpuratus 4.9 11.5 9.3 10 22.5 4 5.0 3
(Lamarck, 1819)

Ameghinomya antiqua == = == — 1.8 2.5 ví) 4
King, 1831

Littorina araucana 4.9 11.5 6.5 8 —= — — =
Orbigny, 1940

Trimusculus peruvianus 1.9 10 4.8 6 1.8 2.5 2.5 2
Sowerby, 1835

Concholepas concholepas 1.3 9 12.2 11 — =— — =
Brugiere, 1789

Choromytilus chorus 1.1 8 4.9 7 — — — =
(Molina, 1782)

Nassarius gay 0.6 7 2.41 3 =- - — —
Kiener, 1834

Crassilabrum crassilabrum 0.4 5 15.0 12 — — = =
Gray, 1839

Tegula atra 0.4 5 1.3 ] 0.3 1 1.2 1
(Lesson, 1830)

Megabalanus psittacus 0.4 5 2.6 4 — — = =
(Molina, 1782)

Crepidula sp. 0.2 2 3.4 5 — — — —
Nucella calcar 0.2 2 1.5 2 — — — —
Martyn, 1784

Collisella zebrina 0.2 2 7.6 9 — — = —

(Lesson, 1830)

Ra = Rango ordinal asignado a la abundancia ambiental del organismo en la zona intermareal
R, = Rango ordinal asignado a la abundancia de la fase conchocelis en el organismo
* = Expresada como número de filamentos que cruzan un diámetro de un campo ocular de 400 aumentos.

chocelis colonice los distintos sustratos selecti-
vamente. Al respecto, los resultados obtenidos
en los experimentos de inoculación in vitro de
carposporas de Porfphyra en conchas de Chla-
mys (A.) purpuratus, Ostrea chilensis y Tagelus
dombet, indican que esta hipótesis no sería co-
rrecta.

Si bien, a los 55 días de cultivo, se observó
una mayor abundancia de fase conchocelis en
Tagelus domben que en Ch. (A.) purpuratus y O.
chilensis; ya a los 74 días no existió diferencia
significativa en el desarrollo de la fase concho-
celis sobre los tres sustratos calcáreos ensaya-
dos, bajo las condiciones señaladas (Fig. 2). De

esto se desprende que los tres tipos de sustrato
son, a largo plazo, igualmente aptos para el
desarrollo de la fase conchocelis ante una
oferta similar de esporas.

Los cultivos ¿n vitro de carposporas de Porp-
hyra columbina y B. fuscopurpurea indicaron di-
ferencias en el desarrollo de la fase concho-
celis.

El diámetro de esporas de Porphyra y Bangia
una vez asentadas, no mostraron diferencias
significativas, en cambio sí fueron significati-
vamente diferentes el largo y ancho de los
filamentos de ambas fases conchocelis al cabo
de 17 días de cultivo, siendo en ambos casos

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

56
48
aun
3 40 Tagelus dombeii
$ — —— Ostrea chilensis
[e]
> ze == Chlamys (Argopecten) purpuratus
=
9
2 24
o
uo)
€
2
< 16

0 20

211

40 60 80
Tiempo de

incubación (días)

Fig. 2. Desarrollo in vitro de la fase conchocelis de P. columbina en tres tipos de sustrato calcáreo. Abundancia de filamentos
que interceptan un diámetro de un campo ocular de 400 aumentos en el tiempo.

Tabla 11
Comparación de promedios de diámetro de espora,
largo y ancho de filamento de la fase conchocelis
de P. columbina y B. fuscopurpurea,
después de 17 días de cultivo

P. columbina

B. fuscopurpurea

Parámetros Promedio + D.S. n Promedio + D.S. n
Diámetro espora Al 18 AE Vs 16
Largo filamento 286.5 + 95.0 22 87.3 + 44.5 12
Ancho filamento 79+ 2.6 22 49> 0.4 9

mayores los valores registrados para concho-
.celis de Porphyra (Tabla II).

El desarrollo morfológico de ambas fases
conchocelis, mostró también diferencias entre
sí. En Porphyra las esporas desarrollaron un
filamento de germinación, para mostrar ya al

décimoquinto día, dos ramificaciones prima-
rias por filamento, los cuales tenían un aspecto
general tortuoso. En cambio Bangia presentó
filamentos de menor crecimiento, sin ramifi-
caciones y con un desarrollo rectilíneo (Fig. 3).

Con respecto a la importancia ecológica del

212

Fig. 3. Filamentos de fase conchocelis, al cabo de 17 días
de cultivo.

a) Bangia fuscopurpurea

b) Porphyra columbina

sustrato (aparte de servir como superficie de
fijación para algas) otros estudios han demos-
trado el rol que tiene su configuración en la
sobrevivencia de las algas. Lubchenco (1983)
determinó que plántulas de Fucus vesiculosus
que se desarrollan en sustratos heterogéneos
(con pequeñas fisuras, depresiones o coloniza-

dos por cirripedios) escapan al ramoneo de

Littorinma cuando este herbívoro se encuentra
en densidades medias y bajas. En el caso de

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Porphyra, la colonización de la fase conchocelis
en el interior de la matriz calcárea de inverte-
brados, provee a la totalidad de los individuos
de la fase esporofítica, de un mecanismo an-
tiherbívoro aún más efectivo que el descrito
por Lubchenco (op. cit.), en este caso, concho-
celis está suficientemente protegida de los
herbívoros y su sobrevivencia excede a la for-
ma alternante erecta, ante una gran presión
de herbivoría (Lubchenco and Cubit, 1980)
viviendo incluso en las conchas de los mismos
herbívoros. Por otra parte, este mismo me-
canismo le permitiría a conchocelis evitar la
competencia por sustrato con otras algas in-
termareales.

La maduración de conchocelis y la poste-
rior liberación de conchosporas, se evidencian
en la explosiva colonización de la fase gameto-
fítica de Porphyra durante el invierno.

El cultivo masivo de Porphyra en los países:
orientales como Japón y China, utiliza amplia-
mente la característica de conchocelis de ocu-
par sustrato calcáreo para aumentar los rendi-
mientos en la producción (Miura, 1975). En
nuestro país la gran explotación de mitílidos y
gastrópodos produce gran cantidad de con-
chas, las cuales al ser usadas según los métodos
orientales o dispersadas en el litoral permiti-

rían incrementar la producción de Porphyra en
Chile.

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CICLO REPRODUCTIVO ESTACIONAL
DE SEBASTES CAPENSIS GMELIN, 1829 (PISCES, SCORPAENIDAE)
DE BAHIA DE SAN VICENTE, CHILE

Seasonal reproductive cycle of Sebastes capensis Gmelin, 1829
(Pisces, Scorpaenidae) from San Vicente Bay, Chile

EMILIO ALVEAL R. Y RUTH QUINTANA P.*

RESUMEN

La “cabrilla española”, Sebastes capensis Gmelin, 1829 de la
Bahía de San Vicente (Chile) posee fecundación interna,
originando larvas natátiles libres. Esta especie presenta un
ciclo reproductivo anual. Los machos muestran un alto
índice gonádico entre febrero y abril y las hembras dan a
luz larvas entre octubre y febrero. Se estudiaron ovarios y
testículos a través de un año, comenzando en 1983, sobre
la base del índice gonádico y del diagnóstico histológico.

INTRODUCCION

El género Sebastes está representado en Chile
por una sola especie Sebastes capensis (Chen,
1971; Kong, 1980 y Alveal et al. 1983) siendo
ésta una de las pocas especies ovovivíparas de
la ictiofauna chilena.

Sebastes capensis está considerado como una
especie de importancia económica, de ahí que
era necesario conocer su biología, y por sobre
todo su comportamiento reproductivo, con el
objeto de evitar a futuro la extracción de dicha

*Departamento de Biología y Tecnología del Mar. Ponti-
ficia Universidad Católica de Chile. Sede Regional Tal-
cahuano. Casilla 127. Talcahuano, Chile.

SUMMARY

The “cabrilla española” (= Chilean rockfish), Sebastes
capensis Gmelin, 1829 from San Vicente Bay (Chile) has
internal fertilization. Females give birth to free swimming
larvae. This species shows an annual reproductive cycle.
Males have a high gonadic index between February and
April and females give birth to larvae between October
and February. Ovaries and testes were studied through
the year beginning in August 1983 based on the gonadic
index and histological diagnostic.

especie en la época en que se presentan las
hembras grávidas, a punto de emitir sus em-
briones al medio.

El presente estudio entrega el comporta-
miento reproductivo de $. capensis durante un
año, a través del estudio mensual del índice
gonádico (Moser, 1967b) y del análisis histoló-
gico mensual de ovarios y testículos.

A través del método histológico, se logró
determinar una escala de madurez sexual de 5
estadios, tanto para machos como para hem-
bras. Ello posibilitó determinar la época en
que el macho fertiliza a la hembra, y el período
de postura de los embriones, el cual abarcaría
alrededor de 5 meses a contar de julio.

214

PENINSULA TUMBES

BAHIA DE SAN VICENTE

8'

* Sector de recolección

Fig. 1. Lugares de recolección de Sebastes capensis.

MATERIALES Y METODOS

Los especímenes se obtuvieron a través de los
desembarques de la pesca artesanal y median-
te buceo en la Bahía de San Vicente (Fig. 1).

Se capturó un total de 225 especímenes de
Sebastes capensis, 67 machos y 158 hembras,
cuyos rangos de longitud estándar variaron
entre 209 y 390 mm. El muestreo abarca un
período de 12 meses a contar de agosto de
1983.

El índice gonádico se calculó para cada es-
pécimen de acuerdo con la siguiente fórmula

(Moser, 1967b)

[(Peso gónada) / (longitud estándar)*] x 107
para así hacerlo comparable con estudios de
otros Sebastes del hemisferio norte.

El índice gonádico en hembras se determi-
nó para tres categorías de ovarios (Moser, Op.
ctt.):

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

1. Ovarios desovados
li. Ovarios con oocitos en maduración

ill. Ovarios con embriones en desarrollo

El diámetro de los oocitos y embriones, se
midió con un micrómetro ocular, en un mi-
croscopio estereoscópico. Los ovarios que con-
tenían oocitos con un diámetro menor a 0.2
mm se consideraron como ovarios desovados
(Moser, op. cit.).

Las gónadas fueron pesadas con 0,1 gr. de
aproximación y fijadas en formol al 10%.

Para el estudio histológico, se seleccionaron
gónadas en base al grado de desarrollo de las
mismas y a todas las tallas disponibles, consi-
derando para ello una escala macroscópica de
madurez sexual (Alveal, et al., 1983). Luego se
sometieron a las técnicas usuales en cortes his-
tológicos. Sin embargo, para deshidratar e in-
cluir, se usó cloroformo como solvente de la
parafina (Bucke, 1972). Los cortes de ovarios
y testículos tienen un espesor de 10 micras, y
fueron teñidos con hematoxilina de Erhnlich
y eosina.

Se tomó microfotografías, a través de un
microscopio E. Leitz Ortholux, equipado con
cámara fotográfica Orthomat.

RESULTADOS

Histología general del ovario

Cada ovario está compuesto de estroma y teji-
do ovígero protegido por un ovisaco de pare-
des delgadas y muscular. En la región poste-
rior, ambos ovisacos se unen y forman el ovi-
ducto que desemboca en la base de la papila
urogenital, la cual es de forma triangular.

En la sección transversal se observa el estro-
ma, dispuesto como una serie de lamelas suje-
tas dorsalmente al ovisaco, por el “hilum” a
través de un tronco fibromuscular, que se ex-
tiende desde el “hilum” y que contiene a la
arteria y vena del ovario, que se ramifica para
surtir a las lamelas y al tejido ovígero. La su-
perficie de estas lamelas está cubierta por ooci-
tos en diferentes estados de maduración.

Estados de madurez sexual en hembras

L.
Ovarios inactivos en regresión: Abundante

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

presencia de oocitos primarios. El citoplasma
es fuertemente basófilo y homogéneo, el nú-
cleo es grande y adopta más o menos la forma
del oocito y, se localiza en el centro de éste.
Presenta un nucléolo central y/o varios nu-
cléolos periféricos. Estos oocitos tienen entre
40-80 micras de diámetro. En menor propor-
ción es posible encontrar también folículos va-
cíos (Fig. 2).

IT.

Ovarios previtelogénicos: Los oocitos tienden
a alargarse y adoptan una foma más o menos
elíptica. Claras y pequeñas vacuolas lipídicas
comienzan a desarrollarse en la periferia del
citoplasma. Estos oocitos tienen entre 90-185
micras de diámetro. El núcleo en este estado
tiene entre 40-80 micras. Los nucléolos son
periféricos. A consecuencia del desarrollo de
vacuolas el citoplasma se hace menos basófilo

(Fig. 3).

IT.
Ovarios vitelogénicos: Los oocitos presentan
gránulos de vitelo, el núcleo que es más gran-
de adquiere una forma irregular, y se ubica en
el centro del oocito, los nucléolos se encuen-
tran muy cerca de la pared nuclear. En este
estado el folículo comienza a desarrollarse y
consta de la “teca”, zona granulosa, zona ra-
diada, y una profusa red de capilares que se
interpone entre la zona granulosa y la teca.
Los oocitos, en este estado aumentan más
de tamaño, entre 114-384 micras de diámetro,
debido al incremento que producen los grá-
nulos de vitelo, que son esféricos y se dirigen
hacia el interior del citoplasma, ocupando casi
la totalidad de éste. Algunas vacuolas perma-
necen todavía entre los gránulos de vitelo;
pero la mayoría de ellas han sido desplazadas
hacia la periferia (Fig. 4).

IV.

Ovarios maduros: El grado de vitelogénesis es
más avanzado, es decir, comprende el estado
de madurez total. Las muestras no presentan
estados más avanzados de oocitos en madura-
ción e incluye la migración del material nu-
clear a la periferia. El oocito tiene entre 291-
690 micras de diámetro. Los gránulos de vite-
lo se agrandan mucho más y alcanzan hasta 17
micras de diámetro. Las células de la zona

215

granulosa del folículo, se vacuola y muestra
evidencias de agotamiento. La desintegración
de los gránulos de vitelo comienza en la perife-
ria del oocito y prosigue centralmente. Los
folículos de los oocitos más avanzados sufren
una desintegración estructural. La zona radia-
da desarrolla estriaciones radiales (Fig. 5).

v.

Ovarios embriogénicos o en predesove: Des-
pués de la ovulación y fertilización, el desarro-
llo de los embriones es de vida libre en la
cavidad del ovario, agolpados en el fluido ová-
rico, protegidos cada uno de ellos por una
cápsula transparente (membrana externa).
Un espacio perivitelino separa al embrión de
la membrana vitelina o radiada. El estroma
que rodea al embrión está compuesto de fo-
lículos vacíos. La red de capilares que existe
entre la teca y la granulosa permanece intacto
y lleno de eritrocitos. A medida que los em-
briones se desarrollan, las capas epiteliales del
folículo se colapsan y se oscurece el lumen
folicular, pero la red de capilares permanece
intacta. Cuando los embriones alcanzan el es-
tado de formación de los ojos, un segundo
grupo de oocitos es reclutado de oocitos resi-
duales de 90 micras de diámetro, que están
siempre presentes en el ovario (Fig. 6).

Histología general de los testículos

El espermioducto, corre a lo largo de la super-
ficie dorsal de cada testículo. Anteriormente
este ducto se introduce bajo la superficie de
cada uno de ellos, pero posteriormente es más
superficial. Ambos ductos emergen en la re-
gión posterior de los testículos y, se unen en la
base de la papila urogenital, la cual es cilín-
drica.

Al examen microscópico, cada testículo está
encerrado en un mesotelio escamoso, dentro
del cual existe una túnica fibrosa, la cual es
más gruesa en la superficie dorsal del testículo
y, encierra a la arteria y vena espermática y al
espermioducto. Desde este último aparecen
radiados los ductos eferentes (tienen en
conjunto una forma más o menos triangular),
los cuales se ramifican profusamente para for-
mar una zona de paquetes compactos de túbu-

916 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Fig. 2. Fotomicrografía de un corte de ovario inactivo, donde se muestran los oocitos inactivos, con su núcleo central (N) y
los nucléolos periféricos (n) y el citoplasma fuertemente basófilo (C).

Fig. 3. Fotomicrografía de un corte de ovario previtelogénico, donde se observan las vacuolas lipídicas (V) en la periferia
del citoplasma (C).

Fig. 4. Fotomicrografía de un corte de ovario vitelogénico, donde se aprecian los gránulos de vitelo (GV) distribuidos en el
citoplasma. Es posible observar al igual el folículo (F) que rodea el oocito, con su zona granulosa (ZG), zona radiada (ZR) y
la teca (T).

Fig. 5a. Fotomicrografía de un corte de ovario maduro donde los gránulos de vitelo (GV) aumentan su tamaño y están
distribuidos uniformemente en el citoplasma. Se observa el folículo que rodea al oocito, con su zona radiada, zona
granulosa y la teca.

Fig. 5b. Fotomicrografía de un corte de ovario maduro que muestra oocitos ya fecundados, donde es posible apreciar la
fusión de las gotas oleosas en una gota única, grande (GO) y corte del embrión (E).

Fig. 6a. Fotomicrografía de ovario embriogénico o en predesove, donde es posible apreciar en la región anterior del
embrión la bolsa vitelina (BV), el notocordo (NT) y el cordón nervioso (CN) y en la región caudal la aleta dorsal (D) y anal
(A).

Fig. 6b. Fotomicrografía de ovario en postdesove, que muestra las lamelas ovígeras (LO) con su lumen (L), donde en sus
paredes se denota bastante capilarización (CA).

Fig. 6c. Fotomicrografía con gran aumento, donde se aprecian las paredes de las lamelas ovígeras (LO) y abundante
capilarización.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 917

218

Bo Inactivo

60 1
£0

20

1983

Previtelogenico

11

Vitelogénico

mM

Porcentaje

Maduro

1V

Embriogénico

v

A S 0 N D E PON AUS J

1983 1984

Fig. 7. Cambios mensuales de la frecuencia porcentual de
los estados ováricos de Sebastes capensis en San Vicente,
Chile.

los seminíferos, que están alineados perpen-
dicularmente al borde del testículo (Fig. 10).

Estados de madurez sexual en machos

L.

Inactivos o en recuperación: Los espacios in-
tertubulares están llenos de tejido conectivo y
comienza la renovación del epitelio germinal.
En los túbulos seminíferos hay una multiplica-
ción de cistos, no hay presencia de lumen ni de
espermatozoides. Proliferan las espermatogo-
nias y se observan además, espermatocitos 1 y

II (Fig. 11).
IL.

Espermiogénesis temprana: Se observan cis-
tos con espermatogonias, espermatocitos y es-

Diámetro

Bol.

Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

35 Ovario Embriogénico
Ovario Maduro

Ovario Desovado

30

25

20

Indice gonádico

10

Fig. 8. Indice gonádico promedio en hembras de Sebastes
capensis en San Vicente, Chile. Las líneas verticales indican '
los rangos del índice gonádico.

Embriones
Oocitos > 02 mm de $
Oocitos < 02 mm de D

(mm.)

Fig. 9. Diámetro promedio de oocitos y embriones de
Sebastes capensis en San Vicente, Chile. Las líneas verticales
indican el rango del diámetro.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

permátidas, en diferentes estados de desarro-
llo. El tejido conectivo intertubular comienza a
reducirse y a romperse en algunos lugares
para dar paso al espermatozoide hacia el lu-
men. Las células germinales comienzan a ma-
durar (Fig. 12).

HI.

Espermiogénesis activa: En este estado, el lu-
men, aparece lleno de espermatozoides, y al-
rededor de él, hay voluminosos cistos, bien
delimitados que contienen células germinales
en varias fases de desarrollo. En esta fase los

machos, se supone, que fecundarían a la hem-
bra (Fig. 13).

IV.

Espermiogénesis tardía: En este estado, el lu-
men aparece con espermatozoides, pero los
cistos que rodean al lumen, son más delgados
y se presentan aplastados (Fig. 14).

vV.

Fin de la espermiogénesis: En esta fase, el
tejido conectivo está colapsado. Las paredes
de los túbulos se hacen más gruesas y el diáme-
tro de ellos, más pequeño. Se observan ade-
más, espermios maduros residuales, que no
fueron expulsados durante la fertilización
(Fig. 15).

En relación a los diferentes estados de ma-
durez sexual de los machos a través de los
meses, se da a conocer en la figura 16, y los
valores del índice gonádico para los machos a
través de los meses en la figura 17.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Sebastes capensis, es una especie ovovivípara la
cual inicia sus actividades reproductivas por
una “cópula”, que resulta en fecundación in-
terna (Chen, 1971).

En todas las especies del género Sebastes, la
copulación ocurre antes que el oocito alcance
su estado final de desarrollo (Chen, Of. cit.).
En este caso se comprobó que ocurre el mismo
comportamiento en $. capensis, ya que cuando
los oocitos se encuentran maduros o sufriendo
vitelogénesis; es mayor el porcentaje de ma-
chos que se encuentran en estados iniciales de
espermiogénesis.

219

Magnusson (1955); Moser (1967)b, plan-
tean que en los representantes del género Se-
bastes, los machos y hembras difieren tempo-
ralmente en su ciclo reproductivo, donde los
machos maduran más temprano que las hem-
bras. Durante el período de observación, se
puede indicar que $. capensis para el área estu-
diada mantiene el mismo comportamiento, ya
que el mayor porcentaje de machos maduros
se encuentra entre los meses de enero a abril,
en cambio las hembras durante estos meses se
encuentran en estados inactivos y previtelogé-
nicos (figs. 7, 8, 9, 16, 17).

Moser (Of. cit.), señala que el “peack” máxi-
mo del índice gonádico para los machos del
género Sebastes, ocurre en el verano, para las
especies que gestan y liberan larvas durante el
invierno. Este mismo comportamiento ocurre
en $. capensis, que presenta su “peak” máximo
en febrero. En cambio en las hembras ocurre
entre otoño e invierno, cuando aparecen el
mayor porcentaje con desarrollo de em-
briones.

Sobre la base del estudio histológico, se en-
contró que cuando el ovario presentaba ooci-
tos maduros, en forma simultánea, estaban
presentes en menor proporción oocitos inma-
duros, previtelogénicos, vitelogénicos y em-
briones. Esto nos indicaría que el desove de $.
capensis es parcial.

Moser (1967)a, plantea que después de la
ovulación y fertilización el desarrollo de los
embriones es libre en la cavidad del ovario,
embebidos en un fluido ovárico. El presente
estudio concuerda con este planteamiento, ya
que los embriones están libres dentro de la
cavidad ovárica al lado de las lamelas ovígeras,
teniendo una alimentación vitelina a través del
saco vitelino. Por lo tanto, el ovario llega a
constituir un “útero”, lugar éste, donde se nu-
tren los embriones. Moser (Op. cit.), plantea
que la red de capilares que existe entre la teca
y la zona granulosa del folículo vacío, es un
excelente mecanismo de intercambio de gases
para el embrión, esto se corrobora por la nota-
ble vascularización que presentan las lamelas
observadas en S. capensis.

En las hembras, los valores del índice goná-
dico son más bajos durante octubre a marzo,
que sería el período de postdesove. Un signifi-

292) Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

»
A
=

ki

5

Fig. 10. Fotomicrografía de un corte transversal de testículo, en el que se observa la zona de túbulos seminíferos (TS)
alineados perpendicularmente al borde del testículo. sl

Fig. 11. Fotomicrografía de testículo inactivo en donde se observa la multiplicación de cistos (CI), abundante tejido
conectivo (TC), y espermatogonias (SPG), espermatocitos 1 y II (SPI, SPII).

Fig. 12. Fotomicrografía de testículo en espermiogénesis temprana, observándose los cistos (CI) con espermatogonias
(SPG), espermatocitos (SPI, SPIT) y espermátidas (SPM).

Fig. 13. Fotomicrografía de testículo en espermiogénesis activa, el lumen (L) aparece lleno de espermatozoides (S) y
alrededor de él voluminosos cistos (CI) bien delimitados.

Fig. 14. Fotomicrografía de testículo en espermiogénesis tardía, el lumen (L) aparece lleno de espermios (S) y los cistos
(CI) son más delgados.

Fig. 15. Fotomicrografía de testículo en el fin de la espermiogénesis en el lumen (L) se observan espermios residuales (SR).

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

VA inmaduro

1983

% espermiogénesis
100

1984
temprana

Y 1983

1984
espermiogénesis activa

espermiogénesis
60 tardía

1984

80 fin de la espermiogénesis

1983

1984

Fig. 16. Cambios mensuales de la frecuencia porcentual
de los estados testiculares de Sebastes capensis en San Vicen-
te, Chile.

cativo aumento del índice gonádico comienza
de abril hacia adelante, que es provocado por
el inicio de la vitelogénesis y el desarrollo de
embriones en algunos casos. Los valores más
altos del índice gonádico se encuentran en los
meses de invierno cuando el mayor de las
hembras están grávidas, y con oocitos en ma-
duración.

221

2.5

2.0

=>
ul

Indice gonádico

o

0.5

Fig. 17. Indice gonádico promedio en machos de Sebastes
capensis en San Vicente, Chile. Las líneas verticales indican
el rango del índice gonádico.

Al comparar el índice gonádico en machos,

éste permanece con los valores bajos en los

meses de invierno y primavera y, ello coincide
con el análisis histológico, que revela que los
machos se encuentran en los inicios de la es-
permiogénesis. El marcado incremento en el
peso y talla de los testículos a principios del
verano, que se ve reflejado con el índice goná-
dico alto, demuestra el aumento en la proli-
feración de células durante la espermiogéne-
sis. El índice gonádico permanece con los valo-
res altos durante los meses de verano, encon-
trándose su valor máximo en el mes de febre-
ro, y continuando hasta el otoño, cuando se
encuentran los testículos en espermiogénesis
activa. El índice gonádico decrece en otoño, lo
que reflejaría el fin de la espermiogénesis, y la
descarga de espermios durante la “cópula”.
Chen (1971) Moser (1967)a, basados en es-
tudios de Sebastes de California, indican que
los Sebastes presentarían un desove anual, du-
rante un período amplio de 2-5 meses. Á tra-
vés del presente estudio se estimó que $. capen-
sis del área estudiada, sigue el comportamien-

222

to dado para el género, en el sentido de que
presentaría un desove anual y parcial que
abarcaría alrededor de 5 meses.

Durante el período de postdesove, el diá-
metro de los oocitos no sobrepasa a los 0,2 mm
de diámetro y éstos corresponderían a oocitos
infértiles (Moser, 1967b; Oliva et al. 1983). En
el verano comienza a incrementarse gradual-
mente el diámetro de los oocitos, a causa de la
vitelogénesis, y se mantiene este comporta-
miento hasta el otoño, cuando aparecen las
primeras hembras grávidas.

El ejemplar de menor talla en que se deter-
minó maduración avanzada fue de 209 mm,
de longitud estándar para las hembras y de
217 mm para los machos, esto nos estaría indi-
cando las tallas aproximadas de primera ma-
durez para S. capensis en Bahía de San Vicente.

A pesar de los esfuerzos por obtener especí-
menes durante el transcurso del año de obser-
vación, durante ciertos meses, en especial en
aquellos que se refieren a la época de emisión
de embriones (julio- noviembre) no fue posible
colectar un mayor número de ejemplares. Es-
ta escasez de especímenes podría deberse co-
mo resultado de una migración de la especie, a
un área de desove o alimentación desconocida
por nosotros. Esta hipótesis es confirmada por
Moiseev et al. para Sebastes aulutus del Mar del
Norte, pero difiere de lo planteado por Miller
et al. (1967) que indica que la mayoría de las
especies de Sebastes son de vida secundaria.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Por otra parte, la masa gonadal de las hem-
bras grávidas, ocupa casi la totalidad de la
cavidad. peritoneal, lo que indicaría que las
hembras no se alimentarían durante la época
de gestación, con ello se explicaría en parte el
que no fuera posible su captura mediante lí-
nea de mano. Ante esta situación se procedió a
bucear el área de captura y los resultados fue-
ron negativos, ya que no fue posible encontrar
ejemplares, lo que nos hace suponer entonces
que $. capensis podría emigrar a aguas más
profundas.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos en forma muy especial a los
Sres.: José Morillas A., Docente del Departa-
mento de Biología y Tecnología del Mar de la
Pontificia Universidad Católica de Chile, Sede
Regional Talcahuano, por su valioso aporte
en el diagnóstico histológico.

Al Sr. Darío Dittus M., Docente del Depar-
tamento de Biología y Tecnología del Mar de
la Pontificia Universidad Católica de Chile,
Sede Regional Talcahuano, por su valiosa coo-
peración en la confección de las figuras. -

AlSr. Hernán Cortés M., Técnico del Labo-
ratorio de Histología del Departamento de
Biología y Tecnología del Mar, de la Pontificia
Universidad Católica de Chile, Sede Regional
Talcahuano, por sus aportes técnicos en el
trabajo histológico.

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UN El
o ADA

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, pp. 225-229, 1985.

DESCRIPCION DE LA LARVA DE CICINDELA (PLECTOGRAPHA)
GORMAZI (REED, 1871). (COLEOPTERA, CICINDELIDAE)

Description of the larva of Cicindela (Plectographa) gormazi
(Reed, 1871). (Coleoptera, Cicindelidae)

TOMAS CEKALOVIC K.* Y MARIO REYES S.**

RESUMEN

Se describe la larva de Cicindela (Plectographa) gormazi
(Reed, 1871), (Coleoptera, Cicindelidae), basado en 22
ejemplares procedentes de: Lago Chapo (41*25'S;
7230"W) y Petrohué Norte (4120'S; 72%25'"W); además
se examinaron 34 adultos del Museo de Zoología de la
Universidad de Concepción (MZUC), para completar la
distribución geográfica de la especie.

INTRODUCCION

De las seis especies de Cicindelidae citadas
para Chile, sólo a Pycnochila fallaciosa (Chevro-
lat) se le estudió el estado larval (Cekalovic,
1981). Revisando el material depositado en el
Museo de Zoología de la Universidad de Con-
cepción (MZUC), hemos separado 34 adultos
y 22 larvas de Cicindela (Plectographa) gormaza,
entregando nuevos aportes al conocimiento

*Conservador de Museo, Facultad de Ciencias Biológicas
y de Recursos Naturales. Casilla 2407, Universidad de
Concepción.

**Profesor de Pedagogía Media en Biología y Química,
Facultad de Educación, Humanidades y Arte, Universi-
dad de Concepción.

ABSTRACT

The description of the larva of Cicindela (Plectographa)
gormazi (Reed, 1871), (Coleoptera, Cicindelidae), based
on 22 specimens from: Lago Chapo (41*25'S; 72*30'W)
and Petrohué Norte (42*20'S; 72%25'"W) is reported.

The actual geographical distribution of the species is
also completed on the basis of 34 adult specimens in the
collections of Zoological Museum of the University of
Concepción (MZUC).

Keywords: Coleoptera. Cicindelidae. Larval anatomy.
Neotropical Region. Chile.

de estados inmaduros de Coleópteros chile-

nos, en el presente trabajo se describe la larva
y se actualiza la distribución geográfica de la
especie, señalando por primera vez dos nue-
vas localidades de captura (Lago Chapo y Pue-
lo Alto). El presente estudio fue realizado gra-
cias a la valiosa colaboración de los entomólo-
gos Srs. Luis Peña y Mario Pino, quienes pro-
porcionaron parte del material utilizado.

Cicindela (Plectographa) gormazi (Reed, 1871) |
(Figs.: 1-14)

DESCRIPCION

Larva (Fig. 2), cilíndrica, de frágil consisten-
cla, se muestra ligeramente encorvada pre-

226

sentando un color general amarillo testaceo;
excepto en la cara dorsal de la cabeza y el
pronotum que son negros y están fuertemente
quinitizados; el mesa, metanotum y los proce-
sos espiniformes junto al último tergito abdo-
minal de color amarillo anaranjado.

Cabeza: Vista dorsal (Fig. 3). Cápsula cefáli-
ca subtriangular de superficie lisa y brillante,
presentando una suave concavidad hacia el
área central; el foramen magnum (fm); ocelos
(oc 1 y oc 2) de igual tamaño y separados entre
sí por un diámetro, ocelo 3 (oc 3) de la mitad
del tamaño de los precedentes de ubicación
lateral; el área clypeo-labro-distal es la mitad
de largo con respecto a su ancho total; el la-
brum (lbr) (Fig. 9) de margen distal ligera-
mente convexo, presentando en la región late-
ro anterior una pequeña expansión bilobula-
da y otra mayor que la anterior, dentiforme
ubicada al costado del borde interno de la base
de la mandíbula; la mandíbula (md, Fig. 4) es
resistente, fuertemente curvada, con un dien-
te agudo subbasal interno, el extremo de la
mandíbula es muy aguzado, las antenas (ant,
Figs. 13 y 14), de cuatro segmentos, el basal y
el segundo tan ancho como largo, portando
setas espiniformes, segmento tercero de la mi-
tad del ancho e igual largo que los anteriores, y
el apical un tercio más corto que el tercero,
presentando en su cara ventral una promi-
nente seta subapical (Fig. 14).

Vista ventral (Fig. 5), de forma general tra-
pezoidal con superficie hemisférica y brillante
observándose un surco basal mediano profun-
do, presentando un lóbulo a cada lado; el te-
gumento posee varios pelos largos esparcidos;
los ocelos (oc 4 y oc 5) son visibles en el área
latero-subbasal; la lígula (li, Fig. 5) subrectan-
gular de borde anterior recto desde donde se
originan los palpos labiales (plb) formados por
tres artejos de los cuales el basal es inerme, el
segundo presenta cinco fuertes setas en su
parte distal (internas y externas), el segmento
terminal presenta una seta subapical externa;
palpos maxilares (pmx) formados por un pe-
queño cardo (ca) triangular basal que porta
dos largas setas; stipe (sti) amplio con algunas
setas esparcidas en su superficie; galea (ga)
formada por dos segmentos, el basal es el do-
ble del ancho del segmento apical portando

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

varias setas cortas y una más fuerte de ubica-
ción apical interna, el segmento apical tam-
bién lleva pequeñas setas laterales y una larga
y robusta seta de posición distal interna. El
palpifer (plf) está formado por cuatro seg-
mentos subiguales que portan algunas setas,
destacándose una tan larga como la extensión
total del palpifer ubicada en el segmento
basal.

Tórax (Fig. 6), pronotum (pn) dos veces
más ancho que el largo total, de superficie
irregular y finamente granulada, con un esbo-
zo de surco longitudinal mediano; en los bor-
des laterales, apical y basal se encuentran
abundantes setas cortas. Mesanotum (mes),
subcircular, de superficie suavemente granu-
lada, con dos surcos curvos latero anteriores y
dos surcos longitudinales internos divergentes
que se unen en forma de arco; la superficie del
tercio basal y lateral poseen abundantes setas
cortas de irregular disposición. Metanotum
(met), subtrapezoidal con una hendidura
transversal próxima al margen anterior del
cual se originan dos suaves surcos laterales
que no llegan al margen basal, la superficie es
brillante con abundantes pelos dispersos.

Patas: (Fig. 12) proto, mesa y metatorácicas
similares entre sí, el fémur y la tibia con algu-
nos pelos esparcidos y los dorsos armados de
fuertes y cortas espinas puntiagudas dispues-
tas en hileras, uñas gruesas y poco curvadas.

Abdomen, de diez segmentos cilíndricos,
subiguales, a excepción del 9? y 10? que juntos
son de igual tamaño que los anteriores.

Descripción del segmento 3” (Fig. 8), super-
ficie tegumentaria membranosa presentando
áreas quitinizadas que portan algunos pelos
distribuidos como se indica en la figura, el ter-
gum (te) lleva un par de esclerites subcircula-
res, con cuatro a seis setas mayores y otras
pequeñas; el pleurum se encuentra dividido
en dos regiones separadas por la sutura ventro
lateral (svl), la región superior está compuesta
por el epipleuron (epl) con dos esclerites por-
tadores de setas, entre el tergum (te) y los
escleritos del epipleuron se distinguen un spot
con una larga seta y el espiráculo (esp) de
forma circular. La región inferior denomina-
da hipopleuron (hy) presenta dos esclerites
subovales, el esclerite basal ligeramente emar-

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

ginado llevando pelos y setas; el lóbulo coxal
(lcx) tiene cinco setas dispuestas entre algunos
pelos cortos, además de tres pequeños spots
que portan una seta cada una. Eusternum
(eust) formado por un esclerite mayor ante-
rior suboval y con cinco pares de setas laterales
y tres pares en su región central. Sternellum
(stl) compuesta por un par de esclerites ovales
con cinco setas. Los estigmas o espiráculos se
encuentran presentes entre los segmentos ab-
dominales 1? al 8”. El 5 segmento abdominal
(Figs. 2 y 7) presenta en su cara dorsal una
globosa y prominente elevación tegumentaria
bilobulada quitinizada con abundantes setas
espiniformes rectas, además dos largos y ro-
bustos ganchos externos (gae) espiniformes
ligeramente curvados hacia la parte latero ex-
terno, en la cima de los lóbulos y en la base de
los ganchos existe un par de ganchos internos
(gal) (Inner Hoock) (Figs. 7 y 10) cónicos que
portan dos setas rectas destacadas cada uno. El
segmento 10% está constituido por un área
anular denominada por Kemmer con el nom-
bre de “Pygopool” (py), (In Hamilton, 1925, p.
1510)

MEDIDAS

Largo total: 18 mm
Ancho del 3” segmento abdominal: 160 mm

Largo pronotum: 150 mm
Ancho pronotum: 190 mm
Ancho de la cabeza (Máximo): 1.9 mm
Largo de la cabeza (Máximo): 1.5 mm

Se designó como Nepionotipo la larva proce-
dente de Llanquihue: Lago Chapo, enero, 22,
1969, L. Peña.

227

Material examinado: 34 adultos y 22 larvas.

CHILE. LLANQUIHUE: 8 larvas, Petrohué
Norte (41920'S; 72225'"W), marzo, 7, 1974, ].
Solervicens; 3 adultos, Parque Nacional “Vi-
cente Pérez Rosales” (Petrohué), enero, 24,
1973, J. Solervicens; 2 adultos, Petrohué,
abril, 20, 1934, Jaffuel; 1 adulto, N.E. Volcán
Calbuco (41920'S; 72%37'"W); enero, 21/22,
1969, L. Peña; 3 larvas, Lago Chapo (41*25'S;
72230'"W), enero, 22, 1964, L. Peña; 11 larvas
y 1 adulto, Lago Chapo marzo, 30, 1968, L.
Peña; 14 adultos, Puelo Alto (41%40'S;
712213'W), febrero, 14, 1972, M. Pino; 13 adul-
tos, Puelo Alto, febrero, 17, 1972, M. Pino; 1
dulto sin localidad ni fecha, ex-cd. Gutiérrez.

Nora: Se revisaron además la colección Jaf-
fuel y Pirión y la ex-cd. Reed en el Museo de
Concepción, donde no existen ejemplares de
la especie.

HABITAT
Y DISTRIBUCION GEOGRAFICA

Cicindela (Plectographa) gormaza, habita de pre-
ferencia en suelos arenosos, cerca de playas, o
en terrenos planos próximos a los ríos, esteros
o lagunas; durante los días de calor —con
sol— se le suele observar en rápidas carreras y
en los días nublados o lluviosos se ocultan bajo
plantas rastreras u otros sustratos. Las larvas
se encuentran enterradas a unos 5a 10 cms. en
túneles verticales que asoman a la superficie.

El área de dispersión geográfica conocido
para la especie en el N. desde Río Caunahué
(Lago Ranco) (40%08'S; 72*12'"W) y Puelo Alto
(41%40'S; 72%13'W) en la parte más meri-
dional.

BIBLIOGRAFIA

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nes sobre hábitat y distribución geográfica de Pycnochi-
la fallaciosa (Chevrolat, 1854), (Coleoptera, Cicindeli-
dae). Ans. Inst. Pat. Punta Arenas. 12: 251-255, figs.
1-17.

Chevrolat, L.A. 1854. Nouveau genre de Carabiques de la
tribu des carabides. Ann. Soc. Ent. France. 2(3): 665-
668.

Hamilton, C. 1925. Studies on the morphology, taxonomy
and ecology of the larvae of Hoartic tiger-beetles
(Family Cicindelidae). Proc. U.S. Nat. Mus. 65 (17);
N? 2530: 1-87.

Reed, E.C. 1871. Notes on some Chilian cicindelas, with
description of a new species. Ent. Monthl. Mag. 8:
76-77.

998 Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985.

Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile. Tomo 56, 1985. 229

Cicindela (Plectographa) gormazi (Reed, 1871)

Fig. 1: adulto; Fig. 2: larva, vista lateral derecha; Fig. 3: cabeza, vista dorsal; Fig. 4: mandíbula; Fig. 5: cabeza, vista
ventral; Fig. 6: tórax, vista dorsal; Fig. 7: segmento abdominal 5%, vista dorsal; Fig. 8: segmento abdominal 3%; Fig. 9:
labrum, Fig. 10: detalle del gancho interno del 3? segmento abdominal; Fig. 11: máxila; Fig. 12: pata protorácica; Fig. 13:
antena, vista dorsal; Fig. 14: detalle del 3% y 4? segmento en vista ventral.

Abreviaturas utilizadas: ant: antena; ca: cardo; epl: epipleuron,; esp: espiráculo; fe: fémur; fm: foramen magnum, ga:
galea; gae: gancho externo; gai: gancho interno; hy: hipopleuron; lbr: labrum; Icx: lóbulo coxal; li: lígula; md:
mandíbula; mes: mesanotum; met: metanotum, oc: ocelo; pl: pleuron; plb: palpos labiales; plf: palpifer; pn: pronotum;
Py: pygopool; st: estipe; stl: sternellum; sevl: sutura ventro lateral; ta: tarso; tb: tibia; te: tergum; u: uña.

Este Boletín se terminó de imprimir
en los talleres de EDITORIAL UNIVERSITARIA,
San Francisco 454, Santiago de Chile,
en el mes de marzo de 1986

IMPRESO EN CHILE / PRINTED IN CHILE

SOCIEDAD DE BIOLOGIA DE CONCEPCION — CHILE

Fundada el 30 de Abril de 1927, destinada a “fomentar la investigación en las diferentes
ramas de las ciencias biológicas y la difusión de los conocimientos de esa ciencia”.
Sociedad afiliada a Societé de Biologie de Paris desde 1928.

DIRECTORIO FUNDADOR

Presidente: DR. ALEJANDRO LIPSCHÚTZ
Secretario: DR. OTTMAR WILHELM G.
Tesorero: DR. ERNESTO MAHUZIER
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DIRECTORIO ACTUAL

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PUBLICACIONES DE LA SOCIEDAD

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CORRESPONDENCIA

Sociedad de Biología de Concepción
Casilla 2407
CONCEPCION — CHILE

BOLETIN DE LA SOCIEDAD DE BIOLOGIA
DE CONCEPCION - CHILE
ISSN 0037 850X

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VOLUME 56 YEAR 1985

CONTENTS

CEKALOVIC K., T. Catalogue of the Chilean Opiliones (Arachnida) (Spanish). . 7
FERNÁNDEZ B., J. A parasitological study of Merluccius australis (Hutton, 1872)
(Pisces: ira Systematic, statistical and zoogeographic aspects

(SPamisho. ei e Ca o a o A O 31
JEREZ R., V. Taxonomic status and redescription of Procalus viridis (Philippi and

Philippi, 1864) (Coleoptera-Chrysomelidae (Spanish) ............o....... 43
OLIVA M., M. Presence of Nipporhynchus ornatus (Van Cleave, 1918) (Acanthocepha-

la: Gorgorhynchidae) in northern Chile (Spanish) .........o.o........... 49

PARRA, L.E., ANGULO, A.O. and C. JANA-SÁENZ. Hypopharyngeal complex
and ocular area from larvae of Chilecomadia moorei (Silva) and Chilecomadia

valdiviana (Philippi) (Lepidoptera: Cossidae) (Spanish) ................. 51
STUARDO, J. and C. VALDOVINOS. A synonymic list of Chilean Bulimulids
(Mollúusca: Pulmonata) (Enls e O 55

VILLALBA, C. and L. DURÁN. Lepeophtheirus mugiloidis sp. n. (Copepoda, Caligi-
dae) a parasite on Mugilordes chilensis (Molina, 1782) (Pisces: Mugiloididae), in
Chile (Sparta O A e o AOS O A 59
COSCARON, S. On Cnesiamima atroparva Edwards larva and its significance to
interpret the phylogenetic relationships of notogeic black flies (Insecta, Dip-

tera, Simuliidae) Pa o A 67
VILLALBA S., C. and J. FERNANDEZ B. Parasites of Mola ramsay (Giglioli, 1883)
(Bisces:¡Molidae)'n Chile (Spas o a A 7

MOYANO G., H. Chilean marine bryozoans V. New or poorly known taxa (Spanish) 79
LARRAÍN, A.P. A new species of subantarctic echinoid (Echinoidea: Schizasteridae)
(Englsh) La. a a a da o ie ae RON 115
VILLALBA S., C. Distribution, frecuency and biological aspects of Udonella caligorum
Johnston (Monogenea: Udonellidae) on Lepeophtheirus mugiloidis Villalba and
Durán (GCopepoda: Caligidae) (Spanish). Laa o E o Ser o 121
PARRA, L.E., ANGULO, A.O. and C. JANA-SAENZ. Biology and immature stages
of two Chilean saturnid butterflies (Lepidoptera: Saturniidae): specific and

differential diagnostic features (Spanish) ......oooooocooccoccccooo co... 131
OYARZO, R., H. and T. CEKALOVIC K. Birds observed and captured in sections of
the Carretera Austral (Chile) with new localities (Spanish)............... 141

JANA-SÁENZ, C. and A. O. ANGULO. Analysis of the taxonomic position of
Chloridea chilensis Hampson, 1903, a native noctuid moth of economic impor-

tance (Lepidoptera: Noctuidae) (Spanish) ........ooooooccccrocccccanos 145
REYES, E., ALMONACID, M.E., HERMOSILLA, I. and A.O. ANGULO. Spermio-
genesis in Neta chilensis (Walker) (Diptera: Brachycera) (Spanish) ........ 151

CERDA, L. A. »JANA- -SÁENZ, C. and M. A. BEECHE. Detection of the “Pine shoot
moth” in Chile: Rhyacionia buoliana (Schiffermuller, 1776) (Lepidoptera:
Tortricidac) (Spams. da e a a o de O 161

RINGUELET, R.A. A synopsis of the Chilean Hirudinea (Annelida) (Spanish) .. 163

DURET, J. P. Genus Mycetophila Meigen 1803, in Patagonia (Diptera, Mycetophili-
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MATAMALA, F. M., MARTÍNEZ, E., ETCHEPARE, 1. and H. ROMO. Field
observations and ¿n vitro studies of the Conchocelis phase of Porphyra columbi-

na Montagne (Algae, Rhodophyta) (Spanish) .......oooooooooccocoo.oo.. 207
ALVEAL, E. and R. QUINTANA. Seasonal E cycle of Sebastes capensis

Gmelin, 1829 (Pisces. Srornasnida ar £---- ¡Icente Bay, Chile (Spanish) 213
CEKALOVICK.,T. 2b 238 SI Leb il arva of Cicindela (Plectograp-

ha) gormazi (1 07/83 198115 ae) ( (Spanish). aos 995

Impreso en los Talleres de
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