scher in Jena. 


66 Zu 
zu den „Zoolog. Jahrb., h Prerausgegeben von 
engel in Gieben, erschien®, ‚pisher: 


„ent I: Jordan, Karl Dr., Die Smetterlingsfauna Nord- 
„st-Deutschlands, insbesonüere die lepidopterolog. Verhält- 
nisse der Umgebung von Göttixgen. 1886. Preis: 5 Mk. 


Supplement H: v. Dalla Torre, K. W. Dr., Prof. an der Universität 
in Innsbruck, Die F&una von Helgoland. 1889. Preis: 2 Mk. 40 Pf. 


Supplement III: Menticelli, Fr. Sav., a. o. Prof. in Sassari, Studii sui 


Trematodi endoparassiti. Primo contributo di osservazioni 
sui Distomidi. Con 8 tav. e 3 fie. nel testo. 1893. Preis: 15 Mk. 


Supplement IV: Plate, Dr. L., Fauna Chilensis. Abhandlungen 


zur Kenntnis der Zoologie Chiles. I. Band. Erstes Heft. 
Mit 14 lith. Tafeln und 2 Abbildungen im Text. 1897. Preis: 25 Mk. 
— Zweites Heft. Mit 13 lith. Tafeln und’ 1 Abbildung im Text. 
1898. Preis: 20 Mk. — Drittes Heft. Mit 11 Jith. Tafeln und 
2 Abbildungen im Text. 1898. Preis: 20 Mk. 


Supplement V: Plate, [Prof] Dr. L., Fauna Chilensis. Abhand- 
lungen zur Kenntnisder Zoologie Chiles. IL. Band. Erstes 
Heft. Mit 12 lith. Tafeln. 1899. Preis: 20 Mk.— Zweites Heft. 
Mit 6 lith. Tafeln. . 1901. Preis: 20 Mk. — Drittes Heft. Mit 
5 lith. Tafeln und 3 Textabbildungen. 1902. Preis: 12 Mk. 50 Pf. 


Supplement VI: Plate, [Prof] Dr. L, Fauna Chilensis. Abhand- 


lungen zur KenntnisderZoologieChiles UHL,Band. Erstes 
Heft. Mit 13 th. Tafeln nnd 21 Textabbildungen. 1903. Preis: 
20 Mk. — Zweites Heft. Mit 13 lith. Tafeln und 7 Textabbildungen. 
1904, Preis: 20 Mk. — Drittes Heft. Mit 18 lith. Tafeln, 1 Karte 
und 142 Textabbildungen. 1904. Preis: 30 Mk. 5 


Supplement VII: Festschrift zum 70. Geburtstage des Herrn Doe 


Geh. Rats Prof. Dr. A. Weismann. Mit 32 Tafeln und 104 Text- 
abbildungen. 1904. Preis; 60 Mk. 


Supplement VI: Festschrift zum 80. Geburtstage des Herrn Geh. 


Regierungsrats Prof. Dr. Karl Möbius. Mit 20 Tafeln. und 
20 Textabbildungen. 1905. Preis: 36 Mk. 


Supplement IX, 1. Heft: Ivar Arwidsson. Studien über die skar : 
dinavischen und arktischen Maldaniden, nebst Zusammenstellung 
der übrigen bisher bekannten Arten dieser Familie. Mit 12 Tafeln. 1907. 
Preis: 15 Mk. 

Supplement IX, 2. Heft: A. J. Siltala. Trichopterologische Unter- 


suchungen. Nr. 2. Über die postembryonale Entwicklung der Trjehop- 
teren-Larven. Mit 5 Tafeln und 20 Abbildungen im Text. 1907. 
Preis: 16 Mk. 


IN Vz Nachdruck verboten. 


Übersetzungsrecht vorbehalten. 


Die Cestoden der Vögel. 
Von 


Dr. ©. Fuhrmann in Neuchätel. 


I. Allgemeiner Teil. 


Bei keiner Wirbeltiergruppe finden wir eine so reichhaltige 
und zahlreiche Cestoden-Fauna wie in der Klasse der Vögel. Der 
Umstand, daß die so zahlreichen Arten nur dem Äußern nach und 
meist sehr mangelhaft beschrieben waren, veranlaßte mich vor 
11 Jahren, mich speziell mit den Taenien der Vögel zu beschäftigen. 

Die nachfolgenden Zeilen sind eine Zusammenfassung elfjähriger 
Untersuchungen und sind nicht etwa, wie es vielleicht den Anschein 
haben könnte, eine einfache Zusammenstellung der Literatur — 
eine neue Auflage eines Kapitels des den Helminthologen so wert- 
vollen Compendiums der Helminthologie von OÖ. von Lmstow. Es 
enthält die Arbeit vor allem das systematische und faunistische 
Resultat der Untersuchung eines riesigen Materials, wie es bis jetzt 
wohl kaum in den Händen eines einzelnen Helminthologen war. 
Diese auf so breiter Basis ausgeführte Untersuchung war natürlich 
nur dadurch möglich, daß die Herren Direktoren der Museen mir 
mit sehr großer Zuvorkommenheit die zahlreichen Typen und oft 
sehr reichen, großenteils unbestimmten Sammlungen von Vogelcestoden 
ihrer Museen zur Bearbeitung übersandten. | 

Es wurden untersucht vor allem die sehr großen und wichtigen 
helminthologischen Sammlungen des k. k. Hofmuseums in Wien, 
des Museums für Naturkunde von Berlin, dann die ziemlich be- 
deutenden Sammlungen des Museo civico di Storia naturale von 
Genua, der Museen von München, Stuttgart, Greifswald, 
Hamburg, Kopenhagen, Genf, Toulouse, Paris und 
London. 

Zool. Jahrb. Supplement X. 1 


2 O0. FUHRMANN, 


Von Privatsammlungen erhielt ich zur Untersuchung die reiche 
Cestoden-Sammlung von Herrn Prof. Looss aus Cairo, die auf einer 
Expedition nach dem weißen Nil gesammelten Materialien von Prof. 
L. A. JÄGERSKIÖLD (Upsala), außerdem die Cestoden-Sammlung meines 
Freundes Dr. K. WoLFFHÜGEL, sowie Vogeltaenien von den Herren 
Dr. W. CLeErc, Prof. KrABBE, Prof. LönNBERG, Dr. Lutz (San Paolo), 
Prof. Shiptey, Prof. STUDER und meinem leider so früh verstorbenen 
Freunde Dr. W. Voız. 

Den Herren Direktoren der Museen sowie den obengenannten 
Zoologen meinen verbindlichsten Dank für ihr liebenswürdiges Ent- 
segenkommen und ihre wertvolle Unterstützung. 


Die ersten brauchbaren Kenntnisse über Vogelcestoden finden 
wir in den für ihre Zeit trefflichen Arbeiten von BrocH (1782) und 
von Pastor GoEzZE (1782). Der letztere Autor beschrieb bereits ein- 
gehend 14 Arten von Taenien dieser Vertebraten-Gruppe. Im Jahre 
1819 gab dann der Vater der Helminthologie C. A. RupoLrHr seine 
Entozoorum Synopsis heraus, nachdem er bereits 1309 eine 
sroße Arbeit über die Naturgeschichte der parasitischen Würmer ver- 
öffentlicht hatte. Erstere Arbeit enthält eine gründliche Zusammen- 
stellung des bis dahin über die Helminthen Bekannten, und RupoLpHL 
charakterisiert in dieser Arbeit 54 sichere und erwähnt 30 un- 
sichere Vogeltaenien-Arten, von welchen die meisten von ihm selbst 
aufgestellt wurden. 31 Jahre später gab dann C. M. Diese in 
seinem Systema Helminthum eine neue Zusammenstellung des 
über die Helminthen Bekannten. In der Zwischenzeit von 1819 bis 
1850 waren zahlreiche Forscher tätig gewesen, unsere Kenntnisse 
über die Parasiten zu vermehren, so daß wir eine bedeutende Ver- 
mehrung der Arten auch für die Vogelcestoden konstatieren können. 
Dressing charakterisiert die Arten und gibt die Synonymie und Lite- 
ratur von 81 sichern und 28 fraglichen Taenien der Vögel an. Im 
Jahre 1878 und dann in einem Nachtrag 1889 gab O. v. Linstow 
in seinem ÖCompendium der Helminthologie ein neues Ver- 
zeichnis der bekannten Helminthen, die im tierischen Körper leben, 
angeordnet nach ihren Wohntieren, unter Angabe der Organe, in denen 
sie gefunden wurden. Es ist dies eine neue vervollständigte Auflage des 
letzten Kapitels des Systema Helminthum von ©. M. Dızsıne. Wir 
finden in der Arbeit von v. Linstow ca. 230 Vogelcestoden-Arten 
aus etwa 340 Vogelspecies angegeben. 

Viele der von diesem Autor angeführten Taenien-Arten müssen 


Die Cestoden der Vögel. 3 


auf Grund unserer Untersuchungen als Synonyme eingezogen, andere 
wegen mangelnder Beschreibung für immer ausgeschieden werden. 
Trotzdem ist die Zahl der heute bekannten Vogelcestoden auf ca. 
500 angestiegen, und die Zahl der Vögel, aus welchen Cestoden be- 
kannt, hat sich namentlich durch die Untersuchung der reichen 
Materialien, welche mir zur Verfügung gestellt wurden, um etwa 
200 Arten vermehrt. Es ist deshalb angezeigt, eine neue, gründ- 
lich revidierte Zusammenstellung der systematischen und faunistischen 
Kenntnisse über die Vogelcestoden zu geben, dies um so mehr, als 
bis vor kurzem noch sämtliche Taenien der Vögel unter dem Genus- 
namen 7aenia figurierten. Nun sind aber seit einigen Jahren von 
verschiedenen Autoren alte und neue Arten (unsere Untersuchungen 
ausgeschlossen, etwa 150 Species) in zahlreichen Genera unter- 
gebracht worden. Unsere elfjährigen Untersuchungen haben uns 
erlaubt, fast alle übrigen Vogelcestoden (ca. 300), mit Ausnahme 
von 50 ungenügend bekannten Arten, in 50 verschiedenen Genera 
unterzubringen, so daß jetzt fast sämtliche Vogeltaenien eine be- 
stimmte, gut charakterisierte Stellung im System besitzen. 

Da die Zahl der Vogelarten etwa 12000 beträgt und erst aus 
etwa 540 Vögeln Cestoden bekannt sind, steht zu erwarten, dab 
noch eine sehr große Zahl von neuen Species gefunden werden wird, 
um so mehr als die Avifauna der außereuropäischen Erdteile, mit 
Ausnahme von Südamerika, woselbst OÖLFERS und NATTERER sehr 
eifrig gesammelt haben, helminthologisch noch sehr wenig unter- 
sucht ist. 


Betrachtet man die Verteilung der zahlreichen 
Taenien-Arten in den verschiedenen Vogelgruppen, so 
beobachtet man die sehr charakteristische Erschei- 
nung, daß eine bestimmte Art immer nur in einer be- 
stimmten Vogelgruppe vorkommt und so für dieselbe 
typisch ist. Dieser Umstand erleichtert natürlich die Bestimmung 
der Taenien der Vögel bedeutend und ist der Grund, dab auch die 
älteren Autoren, trotzdem die Beschreibung der Arten eine höchst 
mangelhafte war, dieselben meist richtig bestimmen konnten. Man 
findet allerdings in den helminthologischen Sammlungen sehr häufig 
eine Benennung, sogar von Spezialisten bestimmter Arten, welche 
zeigt, daß man sich auf die Spezialisierung des Wohnortes etwas zu 


sehr verlassen und namentlich aber zu wenig im Auge behielt, 
1* 


4 O0. FUHRMAnN, 


wie wenig vollständig unsere Kenntnisse der Parasitenfauna der 
Vögel ist. 

Wir treffen andrerseits in der Literatur zahireiche Fälle, wo der 
Zoologe, auf mangelhafte Artbeschreibungen allein sich stützend, 
aus einer Vogelgruppe Arten signalisiert hat, welche für eine andere 
Vogelgruppe charakteristisch sind. Diese Fälle, weil sie von ge- 
wisser Bedeutung, indem sie unserer Erfahrung und dem von uns 
oben aufgestellten Satze der Spezialisierung des Wohnorts wider- 
sprechen, sollen hier kurz besprochen werden. Dabei sollen nur 
diejenigen erwähnt und einer Kritik unterzogen werden, welche in 
der neuern Literatur, in v. Linstow’s Compendium der Helmin- 
thologie und später, zitiert wurden, und zwar deshalb, weil die ganz 
alten diesbezüglichen Angaben ganz wertlos sind. 

Zunächst sei zweier Fälle Erwähnung getan, in welchen ein 
Säugetiercestode in einem Vogel und umgekehrt eine Vogeltaenie 
beim Menschen beobachtet wurde. 

Es berichtet LEoxArDı 1898 von einem Fall von Taenia medio- 
canellata in Himantopus candıdus, den dann aber Tarozzı 1899 dahin 
berichtigte, dab er zeigte, daß die vermeintliche Menschentaenie 
eine typische T’aenie des betreffenden Vogels, nämlich Acoleus vag?- 
natus, war. Wie man diese beiden Arten verwechseln kann, ist mir 
allerdings unerklärlich. 

Etwas anders lieren die Verhältnisse bei Hymenolepis lanceolata 
der Gans, welche von ZscHokkE (1902) als Parasit des Homo sapiens 
beschrieben wurde. Dieser höchst eigentümliche Befund hätte es 
sehr wünschenswert gemacht, über die nähern Umstände des Fundes 
ganz genaue Angaben zu besitzen, die aber leider nicht gegeben 
wurden. Meiner Ansicht nach beruht dieser Befund auf einem Irr- 
tum, denn es scheint mir, wie alle bis jetzt bekannten faunistischen 
Tatsachen beweisen, unmöglich, daß eine Vogelcestoden-Larve sich 
im Menschen entwickeln kann. Hymenolepis lanceolataı kommt in 
Entenvögeln vor und ist daselbst nur in ganz wenigen Arten ge- 
funden worden. Bei seinem Vorkommen in Lamellirostres ist auf- 
fallend, dab diese Art sehr häufig in der Gans, nie in Anas boschas 
(nur NrrscHh zitiert einen mir fraglich scheinenden Fall) gefunden 
wurde, obwohl diese beiden Haustiere unter ganz gleichen Bedingungen 
leben und sich sehr ähnlich ernähren. Die in Crustaceen lebende 
Larve verlangt also ganz bestimmte Entwicklungsbedingungen, welche 
gewiß nicht in der Gans und im Menschen dieselben sind. 

ZSCHOKKE stützt die Möglichkeit seines Befundes auf die Be- 


Die Cestoden der Vögel. 5 


hauptung, daß „im Laufe der letzten Jahre eine Reihe von Taenien, 
die man typisch für Säuger ansah, in Vögeln und umgekehrt Vogel- 
cestoden in Säugetieren entdeckt worden“. Diese Behauptung ist 
ungenau; richtig ist nur, daß wir dieselben Cestoden-Genera in 
Vögeln und Säugetieren antreffen können, aber kein einziger 
Fall ist bekannt, wo eine bestimmte Art zugleich in einem 
Vogel und einem Säugetier vorkam. Ersteres ist keineswegs ver- 
wunderlich, letzteres aber wäre um so mehr unwahrscheinlich, als 
wir, wie wir sehen werden, nicht einmal unter den Cestoden der 
Vögel sichere Fälle kennen, wo eine bestimmte Art in zwei oder 
mehreren verschiedenen, systematisch scharf getrennten Vogelgruppen 
vorkommt. 

Die diesbezüglichen in der Literatur zitierten Fälle sind, wie 
schon oben gesagt, zwar ziemlich zahlreich, sie sollen hier kurz be- 
sprochen werden, zum Teil auf Grund eigner Kontrolle der be- 
treffenden Fälle. 

1. Tetrabothrius eylindraceus Run. wurde in Zarus und Uria troile 
gefunden. Da die Zaridae und Alcidae jetzt als Lariformes zu- 
sammengestellt werden, hat dieser Befund nichts Auffallendes, wie 
es anfangs scheinen könnte. 

2. Anders steht es mit dem Falle von Tetrabothrius macro- 
cephalus Run., welcher typisch ist für Podicipediformes, aber auch 
in Ehyacophilus glareola, Larus tridactylus und Uria troile gefunden 
worden sein soll. Aus Charadriiformes kennen wir keine Tetrabothrius- 
Art, mit welcher eine Verwechslung vorliegen könnte, und die von 
CoBBoLp stammende Angabe seines Vorkommens in ZRhyacophilus 
kann wohl sicher als falsche Bestimmung taxiert werden, denn auch 
andere Arten von Vogeltaenien dieses Autors sind sicher ganz 
falsch bestimmt, wie aus den Zeichnungen des Autors ersichtlich. 
Was nun das Vorkommen in Lariformes (Zarus und Uria) anbe- 
trifft, so kann es sich sehr wohl um eine Verwechslung mit 7. erostris 
LönnBere handeln, welche wie 7. macrocephalus stark entwickelte 
Öhrchen an den Saugnäpfen hat. 

Diese meine Vermutung hat sich vollkommen bestätigt, indem 
die Nachuntersuchung des Materials von Tetrabothrius macrocephalus 
aus Larus gezeigt hat, daß der betreffende Cestode 7. erostris 
LÖNNBERG war. 

3. Tetrabothrius porrigens MouLın wurde in Nyctiardea nycticoraz 
gefunden und soll nach Srossıch auch in Larus vorkommen; seine 


6 O0. FUHRMANN, 


kurze Beschreibung scheint aber zu zeigen, daß es sich um junge 
Exemplare von 7. cylindraceus oder T. erostris handelt. 

4. Interessant ist das von mir konstatierte Vorkommen von 
Davainea struthionis in Struthio und Ahea bei Materialien, welche 
aus dem Museum für Naturkunde in Berlin stammen. Auf meine 
Anfrage bei Herrn Dr. A. Coruın, dem Vorsteher der helminthologi- 
schen Sammlung, schreibt mir derselbe, daß die Davainea struthionis 
in einer Ahea americana gefunden wurde, welche von OLFERS und 
SELLO (ca. 1821) wohl sicher wild erlegt wurden. Fassen wir 
Struthio und Rhea nur als Familien ein und derselben Vogelordnung 
auf, so spricht der obige Fund nicht gegen die aufgestellte Be- 
hauptung, daß bestimmte T’aenien-Arten immer nur in einer Vogel- 
eruppe vorkommen. Anders aber liegen die Verhältnisse, wenn wir 
Rhea und Struthio, wie gewisse Vogelsystematiker, als die Vertreter 
verschiedener Ordnungen auffassen. Dazu kommt noch als interes- 
sante Tatsache, falls obiger Fund seine Richtigkeit hat, daß Ahea und 
Struthio geographisch scharf voneinander getrennt sind. 

5. Davainea cestieillus (MoLin) aus Gallus wird von v. Linstow 
auch aus Houbara undulata erwähnt: die Einsicht in das betreffende 
Material, das sich im Museum von Stuttgart findet, hat gezeigt, dab 
es sich um Jdiogenes otidis KRABBE handelt. 

6. Davainea crassula (Run.), eine Tauben-Davainea, soll auch 
in Anas boschas, ja sogar in Psittacus vorkommen; da man D. crassula 
aber nur den Haken nach kannte (KrABgE, 1869), so haben diese 
Bestimmungen bei der großen Ähnlichkeit der Davainea-Haken keine 
Bedeutung. 

7. Taenia filiformis Ruv., welche eigentlich 7. longissima GOFZE 
zu nennen, wurde in einem Papagei gefunden und ist sehr unvoll- 
ständig beschrieben worden, so daß dieselbe zu den Species in- 
quirendae gehört. Diese Art soll nun nach einem spätern Autor 
auch in Gallirex vorkommen, eine Angabe, die natürlich ganz wertlos, 
da weder der Typus noch eine richtige Beschreibung existiert. 

8. Aus Oriolus galbula L. wurde die für Spechte typische Da- 
vainea frontina (Dus.) signalisiert; Untersuchung des diesbezüglichen 
Materials hat aber gezeigt, dab es sich um Davainea compacta ÜLERC 
handelt. 

9. Monopylidium infundibuliforme (GOEZE) oder richtiger M. in- 
Fundibulum (BuocH), welche typisch ist für gewisse Galliformes, 
ist auch in Anas boschas, Goura, Columba livia dom. und sogar in 
Fringilla domestica gefunden worden. Diese Angaben stammen von 


Die Cestoden der Vögel. 7 


BErLInGHAMm 1844 und Meenın 1881 und sind absolut wertlos, da 
die Bestimmungen dieser Autoren durchaus unzuverlässig sind. 

10. Die Angabe, dab Monopylidium erateriforme (GOEZE) außer in 
Pieus auch in Merops und Upupa vorkommt, stammt von BREMSER 
und Dresine und ist wohl unzutreffend. 

11. Anonchotaenia (Amerina) longiovata FuHrMmAnN soll nach 
unsern Angaben in Passeriformes und in Plegadis vorkommen; ich 
glaube aber, daß hier vielleicht eine Etikettenverwechslung vor sich 
gegangen, und es ist deshalb hinter Plegadis als Wirt für obige Taenie 
ein Fragezeichen zu setzen, das in der betreffenden Arbeit (1901 e) 
aus Versehen vergessen wurde. Die Arten des Genus Anonchotaenia 
sind äußerlich und anatomisch so ähnlich, daß es auch möglich ist, 
dab es sich um 2 naheverwandte Arten handelt, was aber wegen 
Mangel an Material nicht eruiert werden konnte. 

12. Hymenolepis lanceolata, welche in mehreren Anseriformes ein 
charakteristischer Parasit ist, soll auch in Podiceps und Phoeni- 
copterus vorkommen. Wieich am Originalmaterialnachweisen konnte, ist 
die AH. lanceolata aus Podiceps nichts anderes als der interessante getrennt- 
geschlechtliche Cestode Diozcocestus aspera (MeHLıs), mit welchem 
H. lanceolata äußerlich große Ähnlichkeit hat, während die H. lan- 
ceolata aus Phoenicopterus identisch ist mit Amabilia lamelligera (ÖwEN). 
Vielfach werden zwar die Phoenicopteri zu den Lamellirostres 
gestellt; dann wäre das Vorkommen von AH. lanceolata, wenn der 
Wirklichkeit entsprechend, hier nicht zu erwähnen. Diese syste- 
matische Stellung ist aber nicht den Tatsachen entsprechend, denn 
diese Vogelgruppe gehört eher in die Nähe der Ciconiiformes 
und zeigt übrigens eine ihr ganz eigene Cestoden-Fauna. 

13. HAymenolepis anatina und Diorchis acuminata sind beide von 
Crerc 1903 in Anseriformes und in einer Fulica atra gefunden 
worden. Der Umstand, daß in gleichen Ralliformes 2 Taenien- 
Arten, von welchen namentlich die erstere ein sehr verbreiteter 
typischer Entenvogelcestode ist, konstatiert wurden, macht es mir 
nicht unwahrscheinlich, daß hier eine falsche Etikettierung oder eine 
Etikettenverwechslung vorliegt, was bei den oft schwierigen Ver- 
hältnissen, unter welchen der Autor seine reiche Vogelcestodensamm- 
lung anlegte, nicht ausgeschlossen zu sein scheint. 

14. Hymenolepis tenwirostris Rup. ist ein Cestode der Anseri- 
formes, soll aber auch in Zarus tridactylus einmal gefunden worden 
sein. Dieser Befund stammt, wie der von Tetrabothrius macro- 
cephalus Ru». aus eben demselben Vogel, von v. MARENZELLER ($. COMINT, 


O0. FuHrmann, 


ee) 


1887), welcher die Würmer der internationalen Polarfahrt 1882/83 
bearbeitete. Daß zugleich in derselben ZLarus-Art 2 Cestoden von 
andern Vogelgruppen gefunden wurden, erlaubte die Richtigkeit der 
Bestimmung anzuzweifeln, und es hat auch die Untersuchung des be- 
treffenden Materials, das ich der Güte des Herrn Prof. v. MARENZELLER 
verdanke, gezeigt, dab H. tenwirostris nichts anderes als Anomotaenia 
micracantha (KRABBE), während 7. macrocephalus, wie schon oben be- 
merkt, 7. erostris ist. 

15. Hymenolepis microsoma ÜCREPLIN, welche sonst im Anseri- 
formes vorkommt, ist nach KrazsE (1869, p. 298) von Parr u. 
Oruick auch in Larus glaucus aufgefunden worden. Diese Bestim- 
mung beruht auf Beobachtung der Haken, welche nach KrABBE 
0,035—0,061 mm lang sind. Diese große Variabilität in der Länge 
sowie die ebenso bedeutende Variabilität der Form, welche aus den 
minutiösen Hakenzeichnungen der trefflichen und unentbehrlichen 
Arbeit Kraggr’s hervorgeht, macht es mir wahrscheinlich, dab wir 
es nieht mit 1, sondern mit 2 verschiedenen Arten zu tun haben. 
Die anatomische Untersuchung würde hier Aufklärung verschaffen. 

16. Hymenolepis villosa (Brock) ist eine überaus typische Taenie, 
welche häufig in Otidiformes gefunden wurde, sie wird aber 
ebenfalls aus Tetraogallus signalisiert, und ich hatte selbst einmal 
Material in Händen, welches aus Gallus stammte (Museum Berlin) 
und mit A. villosa identisch schien. Leider war das Material 
nicht besonders gut erhalten. Czerc 1906a, der die Art genauer 
untersucht hat, findet zwei Formen; bei der einen ist der Uterus 
ein transversaler Schlauch, der häufig seitlich angeschwollen und 
nach hinten umgebogen, während in der zweiten Form, welche aus 
meiner Sammlung stammt und unbekannter Herkunft ist, der Uterus 
ziemlich stark verzweigt und zugleich seitlich nach vorn um- 
gebogen (s. Cnerc, fig. 15 u. 16). Cverc glaubt, dab diese ver- 
schiedene Biegung des Uterus durch verschiedene Streckung der 
Proglottis zustande gekommen, doch zeigt ein Vergleich der beiden 
Figuren, daß bei beiden Cestoden die Länge der Proglottis die- 
selbe ist, also beide den gleichen Kontraktionszustand zeigen. 
CLErc gibt an, daß das Material, das ich ihm zur Einsicht gab, aus 
Afrika stammt, dies ist, wie eine Nachfrage ergab, nicht richtig; 
ebenso ist der Name des Wirtes dieses Materials nicht bekannt, so dab 
es nicht unmöglich, daß der betreffende Cestode aus einem Vertreter 
der Galliformes stammt und hier also vielleicht 2 verschiedene Arten 
vorliegen. Die mir zur Verfügung stehenden, wegen des mangel- 


Die Cestoden der Vögel. 9 


haften Erhaltungszustandes nicht sehr guten Präparate von 
H. villosa aus dem Huhn zeigen, wenn auch nicht deutlich, eine 
ähnliche Biegung des Uterus, wie sie ULerc in fig. 16 (s. oben) 
zeichnet. Es bedarf aber neuen Materials, und namentlich auch der 
Untersuchung der Haken, um zu entscheiden, ob wir es mit 1 oder 
2 verschiedenen äußerlich ähnlichen Arten zu tun haben. Die 
H. villosa aus Tetraogallus ist wohl eine besondere Art, da die 
Haken nach KRrRABBE nur 0,011 statt 0,024—0,026 mm lang sind. 

17. Hymenolepis serpentulus (SCHRANK) ist ein typischer Cestode 
der Corvidae, soll aber auch nach v. Lisstow in Dendrocopus major, 
einem Specht, vorkommen. Nach FÜRBRINGER gehören die Pici mit 
den Passeres in die Gruppe der Pico-Passeriformes. Der Für- 
BRINGER' schen Klassifikation der Vögel folgend, hätte die Angabe 
des Vorkommens von H. serpentulus in einem Picus nichts Besonderes, 
doch ist die ganze Cestoden-Fauna dieser Vögel total verschieden 
von derjenigen der Passeriformes.. Sehen wir uns die Zeichnung 
der Haken an, die v. Lınstow von der betreffenden A. serpentulus gibt, 
so bemerken wir, dab sie eine andere Form haben als die typischen 
Haken obiger Taenie, indem der Hakenteil bei der v. Lixsrow’schen 
Form ziemlich bedeutend kürzer, d. h. gleichlang wie der vordere 
Hebelarm, ist. Es kann sich also hier sehr wohl um eine andere 
Art handeln. Die Angabe, daß derselbe Cestode auch in Dendro- 
copus leuconotus vorkommt, wird wohl auf demselben Irrtum be- 
ruhen. 

18. Aploparaksis filum, ein häufiger Parasit zahlreicher Cha- 
radriiformes, ist von LÖnnBERG auch aus FPolyborus tharus 
(Accipitres) erwähnt worden, doch handelt es sich wohl hier um 
einen mit dem Wirt gefressenen Cestoden des Raubvogels. Der- 
artige Fälle sind mehrere bekannt; so hat man Aym. fringillarum, 
T. undulata usw. in verschiedenen Raubvögeln gefunden. 

19. Ophryocotyle proteus Frıs wird von LÖNNBERG (1890) außer 
aus Tringa und Charadrius auch aus Larus canus erwähnt. Wie 
weit diese Angabe richtig, läßt sich bei der mangelhaften Kenntnis 
dieser Formen nicht beurteilen, übrigens ist dies nicht unmöglich 
und unserer Behauptung nicht widersprechend, da Lari und Charadrü 
zusammengehören und nach der neuern Systematik die Gruppe der 
Charadriiformes bilden. 

20. Fimbriaria fasciolaris (PAuLas) ist in Entenvögeln gefunden 
worden, soll aber auch nach Crrrtın und Morm im Huhne vor- 
kommen. Die diesbezüglichen Angaben scheinen auch WOLFFHÜGEL 


10 OÖ. FuHRMmann, 


1900 etwas wunderbar, auf jeden Fall liegt kein Beweis für die 
Richtigkeit dieser alten Beobachtung vor. 

21. Die Angaben von Biuterina trapezoides FUHRMANN aus (apri- 
mulgus sp. und von Böuterina longiceps (RuD.) aus Cairina moschata 
sind wohl auf Etikettenverwechslung zurückzuführen. 

Dies wären alle Fälle, in welchen eine Öestoden-Art zwei ver- 
schiedene Vogelgruppen bewohnt. Bei fast allen haben wir wahr- 
scheinlich machen oder sicher nachweisen können, daß es sich um 
einen Irrtum handelt. Der Umstand, das alle diese Ausnahmefälle 
(mit Ausnahme von ZH. villosa) nur in der Einzahl beobachtet 
wurden, scheint mir unsere Annahme von der Unrichtigkeit der Be- 
stimmung der betreffenden Cestoden noch zu bestätigen. 

Ebenfalls für unsere Behauptung der scharfen Trennung der 
Taenien-Fauna der einzelnen Vogelgruppen spricht der Umstand, 
daß in dem sehr großen Material, daß ich dank dem Entgegen- 
kommen der Museen erhielt, mir nicht ein sicherer Fall vorge- 
kommen ist, der für die Unrichtigkeit des von mir aufgestellten 
Satzes spräche. Nur zwei Befunde schienen dagegen zu sprechen: 
ich fand nämlich einmal in zwei Gläsern, das eine mit Gallus, das 
andere mit Struthio (Süd-Afrika) etikettiert, im erstern Triaenophorus 
nodulosus, im zweiten HAymenolepis villosa. Genaue Erkundigungen 
ergaben, dab es sich im ersten Falle um eine KEtikettenverwechslung 
handelte; im zweiten Falle zeigte der Zettel, der im Glase lag, dab 
Öestoden unbekannter Herkunft und aus unbekanntem Wirte vorlagen. 

Um derartige Verwechslungen wird es sich wohl auch in einigen 
der oben zitierten Fälle handeln, da das von einem Helminthologen 
untersuchte Material meist nicht von ihm selbst gesammelt ist. 

Nur der Fall von H. villosa, die in Oditiformes und auch in 
Galliformes gefunden worden, scheint wirklich zu bestehen, 
wenn nicht, wie wir oben näher auseinandersetzten, vielleicht auch 
hier 2 verschiedene Arten vorliegen. 

Es kann also der Satz gelten: Die verschiedenen Arten 
von Vogeltaenien bewohnen immer nur 1 der 26 von 
uns unterschiedenen Vogelgruppen. 

Könnte man alle Angaben der Autoren auf ihre 
Richtigkeit prüfen, so würde sich wohl ergeben, daß 
die meisten Arten sich in bezug auf den Wohnort noch 
viel weiter spezialisieren. Zur Bestätigung dieser Be- 
hauptung können bereits jetzt sehr zahlreiche Tatsachen angeführt 
werden; sie sind aus dem faunistischen Teil leicht zu ersehen. 


Die Cestoden der Vögel. 1] 


Allgemeine Bemerkungen über die Cestoden der verschiedenen 
Vogelgruppen. 


Ich glaube, daß es von einem gewissen Interesse für die Über- 
sicht über den heutigen Stand unserer Kenntnisse und auch für die 
in weiterer Zukunft in Aussicht stehende Bereicherung an Vogel- 
cestoden-Arten ist, eine tabellarische Zusammenstellung zu geben, 
welche für jede Vogelgruppe angibt, in wieviel Vogelarten Cestoden 
gefunden und wieviel Cestoden-Species bis jetzt in den betreffenden 
Vogelgruppen konstatiert wurden. 


Zahl der Zahl 


a u 
i en 
Arten der - £ ? 
Vogeleruppen welchen | in den unter- 
Vogelgruppe Taenien suchten 
: Vögeln 
eunden gefunden 

ca. wurden wurden 
Struthioniformes 3 2 1 
Rheiformes 3 1 3 
Casuariformes 15 1 2 
Apterygiformes 6 2 3 
Crypturiformes 65 6 5 
Galliformes 350 22 43 
Ralliformes 190 4 5 
Gruiformes 30 2 3 
Otidiformes 30 3 ) 
Charadriiformes 260 852 86 
Lari 150 25 22 
Columbiformes 420 19 18 
Podicipediformes 45 9 16 
Procellariformes 120 14 f\ 
Aptenodytiformes 15 5 4 
Steganopodes 68 7 3 
Ciconliformes 150 27 32 
Phoeniecopteri 6 1 5 
Aceipitres 400 36 15 
Anseriformes 200 52 zul 
Psittaciformes 440 22 10 
Coceyeiformes 300 9 5 
Coracliformes 450 24 19 
Strigiftormes 200 9 3 
Piei 500 18 1: 
Passeriformes 7800 144 93 


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12 O0. Funrmann, 


Nach dieser Zusammenstellung, welche uns namentlich vor Augen 
führt, wie unvollständig noch unsere Kenntnisse der Oestoden-Fauna 
der Vögel ist, wollen wir kurz die Taenien-Fauna der einzelnen Vogel- 
oruppen betrachten, um zu sehen, ob sich dieselben nicht mehr oder 
weniger durch ihre Cestoden-Fauna charakterisieren lassen. 

Aus der Gruppe der Ratitae, welche die Struthioniformes, 
Rheiformes, Casuariformes und Apterygiformes umfaßt, kennen wir 
namentlich Vertreter (5 Arten) der Davaineinae, und nur in den 
Apterygiformes wurden 3 Arten gefunden, welche andern Genera 
angehören. 

Die gleiche Eigentümlichkeit der Zusammenstellung der Taenien- 
Fauna treffen wir bei den Crypturiformes, wo von 5 Cestoden- 
Arten 4 Davaineen sind. 

Auch in der großen Gruppe der Galliformes haben wir neben 
1 Anoplocephaliden und einigen Dilepinidae eine sehr große Zahl von 
Davaineinae (23 Arten) und diesen durch die eigentümlichen Uterus- 
verhältnisse naheverwandte Taenien-Arten. 

Diese 6 alten Vogelgruppen zeigen im Gegensatz zu allen übrigen 
ein bedeutendes Vorwiegen der Davaineinae, unter welchen ich die 
Vertreter der Genera Ophryocotyle und Davainea, namentlich auf 
Grund des Baues ihres Scolex, als eine der ältesten Vogelcestoden- 
Gruppen auffasse. Diese Auffassung findet, wie wir eben gesehen, 
eine Stütze im Wohnorte dieser Cestoden. 

Die Ralliformes, Gruiformes und Otidiformes werden bei GADow 
zusammengefaßt unter dem Ordnungsnamen Gruiformes, da aber 
jede der obigen Gruppen ihre ganz besondere Cestoden-Fauna be- 
herbergt, habe ich die Gruppen getrennt aufgeführt. Sie haben 
wohl hauptsächlich infolge der geringen Zahl der untersuchten Ver- 
treter nur ganz wenige ÜÖestoden, und diese zeigen nichts besonders 
Oharakteristisches. 

Ganz unvollständig sind unsere Kenntnisse der Parasitenfauna 
der Ralliformes, indem von 190 Arten nur in 4 Cestoden gefunden 
wurden, unter welchen, was mir auffallend scheint, kein Vertreter 
der Davaineinae sich findet, obwohl diese Vogelgruppe alt sein soll. 

Bei den Gruiformes sind nur 2 Arten, aus welchen Taenien 
bekannt wurden. Zwei derselben sind Davaineen, die 3. Art eine 
Dilepis. 

Bei den Otidiformes, welche zu den Charadriiformes überführen 
und von FÜRBRINGER direkt in diese Gruppe gestellt werden, finden 
sich 2 Idiogeninae und 3 Hymenolepis-Arten. Mit den Charadriiformes 


Die Cestoden der Vögel. 13 


haben sie keine Cestoden gemeinsam, auch scheinen die Davaineidae 
in ersterer Gruppe vorwiegender zu sein als bei den Charadrii- 
formes. 

In der Gruppe der Charadriiformes werden die Charadrii 
und Lari zusammengestellt. Da diese beiden Gruppen keine Parasiten 
gemeinsam haben, sind sie im faunistischen Teil getrennt aufgeführt 
worden. Aus der Gruppe der Charadrii ist die größte Zahl von 
Taenien bekannt, was sich wohl aus ihrer Ernährungsweise erklärt, 
welche eine Infektion mit Cestoden-Larven sehr erleichtert. 

Von den 86 bekannten Arten gehören die meisten den Dilepinidae 
und Hymenolepinidae an, und namentlich sind die Genera Anomo- 
taenia, Choanotaenia, Dilepis, Hymenolepis und Aploparaksıs reich 
vertreten. Die meisten Arten des Genus Monopylidium finden sich 
in den Charadrii, während eigentliche Davainea-Arten nur 2 gefunden 
wurden. Die Mehrzahl der Acoleinae, dieser eigentümlichen Cestoden- 
Formen, bewohnen diese Vogelgruppe. Ebenso treffen wir hier 
2 Arten des interessanten Genus ÖOphryocotyle, welches zu den 
Davaineiden gehört. 

Die Lari scheinen merkwürdigerweise weniger reich an Parasiten 
zu sein, doch sind es fast dieselben Genera von Taenien wie bei den 
Charadrii, welche auch hier am reichsten vertreten sind. Es sind 
dies Anomotaenia, Choanotaenia, Hymenolepis. Von Dilepis und Aplo- 
paraksis ist nur je eine Art vorhanden, während die betreffenden 
Genera bei den Charadrii zusammen durch 12 Species repräsentiert 
sind. Es fehlen vollkommen die Davainea-Arten, die in Charadrüi 
ebenfalls gut vertretenen Monopylidium-Arten und namentlich die 
Acoleinae Typisch ist das Vorhandensein von Tetrabothrius-Arten. 

So unterscheidet sich also die Helminthen-Fauna der Charadri 
und Lari ziemlich scharf, und zwar unterscheiden sie sich nicht nur 
durch die verschiedene Artzusammensetzung, sondern auch durch 
das Vorhandensein verschiedener Genera, welche seiesden Charadrii, sei 
es den Lari fehlen. Die Verwandtschaft der Charadrii und Lari wird 
bei Betrachtung ihrer Cestoden-Fauna ersichtlich durch die ihnen 
gemeinsame starke Vertretung der Dilepinidae und Hymenolepinidae. 

Daß die Alcidae zu den Laridae und nicht zu den Colymbi ge- 
hören, wird durch gemeinsame Taenien-Arten bestätigt. 

Die Cestoden-Fauna der Columbiformes ist namentlich 
charakterisiert durch eine große Zahl von Davaineinae (ca. 50°/,). 
und sie scheinen deshalb parasitologisch den Galliformes und 
Crypturiformes sich zu nähern, während GApvow sie als mit den 


14 OÖ. FUHRMANN, 


Charadriiformes näher verwandt betrachtet, mit welchen sie para- 
sitologisch absolut nichts gemeinsam haben. Nun suchen aber die 
meisten Ornithologen immer noch die Tauben in die Nähe der 
Hühner zu bringen, und auch FÜRBRINGER ist, wie GADOW sagt, nicht 
ganz frei von diesem Gedanken. Unsere Befunde würden die letztere 
Auffassung bestätigen. Nun könnte man allerdings annehmen, daß 
die ähnliche, vegetabilische Ernährungsweise der Galliformes und 
Columbiformes die Ursache ist für die ähnliche Taenien-Fauna; dem- 
gegenüber ist aber zu bemerken, daß sicher nicht mit Körnern und 
Pflanzen, sondern mit dem gelegentlichen Verzehren von Insecten und 
anderm Getier die Larven der Cestoden in den Darm der Wirtstiere 
gelangen, und eben dieselben Nahrungstiere sind es, welche auch 
den meisten andern Vögeln ihre Parasiten geben. Es ist also wohl 
nicht ähnliche Ernährungsweise, sondern ein tieferer phylogenetischer 
Grund, welcher die Zusammensetzung der Parasitenfauna bestimmt. 
In den Columbiformes finden wir auch mehrere Vertreter der bei 
den Vögeln seltnen Anoplocephaliden. 

Die Podicipediformes sind parasitologisch eine sehr selb- 
ständige Gruppe, wir finden bei ihnen keine Davaineinae, dagegen 
einen Vertreter der primitivsten Cyclophylliden-Gruppe, den Tetra- 
bothrius macrocephalus, und die drei nur hier vorkommenden Cestoden- 
Genera Dioscocestus!), Tatria und Schistotaenia. Des fernern be- 
gegnen wir einer Reihe von Arten des sehr spezifizierten Genus 
Hymenolepis. 

Am besten von allen Vogeleruppen sind aber die Procellarii- 
formes charakterisiert, indem hier nur das sehr primitive Genus 
Tetrabothrius durch 7 Arten vertreten und sonst kein anderer Cestode 
‚zu treffen ist. 

Systematisch sind die Procellariiformes als eine ältere Vogel- 
gruppe angesehen, aus welcher sich vielleicht die Aptenodytiformes 
und Steganopodes entwickelt haben. Aus diesen beiden letztern 
Vogelgruppen sind nur ganz wenige Taenien bekannt. Beide be- 
sitzen Tetrabothrius-Arten. Die Larven der Tetrabothrius-Arten scheinen, 
nach dem Wohnort der geschlechtsreifen Tiere zu schließen, in Meeres- 
tieren, vielleicht speziell in Fischen zu hausen, weshalb wir sie in 
Lari und obigen Vögeln hauptsächlich finden. 

Bei den ÖCiconiiformes finden wir vor allem zahlreiche Dilepis- 


1) Es gibt allerdings noch eine Dioicocestus-Art bei einem Vertreter 
der Ciconiiformes. 


Die Cestoden der Vögel. 15 


species und mehrere Anomotaenia- und Hymenolepis-Arten vertreten. 
Nur in der Einzahl finden wir Vertreter der Genera Tetrabothrius, 
Davainea, Dioicocestus sowie zwei Arten des typischen Genus Üy- 
clustera. 

Als Raptatores werden immer noch die Aceipitres und Striges 
zusammengefaßt, welche nach neuern Untersuchungen vollständig 
voneinander zu trennen sind. In der Tat gehören die Accipitres in 
die Nähe der Ciconiiformes, während die Striges zu den Coracii- 
formes zu stellen sind. Diese Ansicht findet, wie wir nachgewiesen 
(1906 a), eine interessante Stütze in der Taenien-Fauna dieser Vögel, 
welche trotz der oft ganz identischen Ernährungsweise total ver- 
schiedene Taenien aufweist, nicht nur was die Arten, sondern auch 
was die Genera anbetrifft. 

Bei den Accipitres finden wir kein Taenien-Genus speziell stark 
vertreten, sondern es sind immer nur ein oder zwei Arten jedes Genus 
vorhanden. Die Genera Ouleitella, Laterotaenia und Oligorchis sind, SO- 
weit unsere jetzigen Kenntnisse reichen, für Tagraubvögel charak- 
teristisch. 

Die Phoenicopteri, welche oft von den Ornithologen zu den 
Anseriformes gestellt werden, haben mit denselben keine Taenien ge- 
meinsam, ebensowenig mit den Ciconiiformes, in deren Nähe sie von 
GApDow gestellt werden. Wir finden bei ihnen zwei für sie bis jetzt 
typische Genera vertreten; es sind dies: Leptotaenia und Amabilia. 

Die Anseriformes, diese pflanzenfressende Vogelgruppe, tritt 
durch die Phoenicopteri mit den Ciconiiformes in verwandtschaftliche 
Beziehungen. Von 63 Taenien-Arten — welche genügend bekannt, 
um sie in ihre resp. Genera einzureihen — sind 48 Hymenolepinidae, 
namentlich Aymenolepis-Arten. 

Die Psittaciformes sind eine sehr scharf begrenzte Gruppe, welche 
eine ganz typische Parasitenfauna besitzt, indem dieselbe nur aus 
Anoplocephaliden (6 Arten) und Davainea-Arten (4 Arten) besteht. 
‘Die Papageien werden von GApow mit den Cuculi zusammen in die 
Gruppe der Cuculiformes gestellt. GARRop war der erste, welcher 
die Verwandtschaft dieser Vogelgruppe mit den Galliformes nach- 
wies. Deshalb ist es vielleicht nicht so erstaunlich und bestätigt 
teilweise seine Angaben helminthologisch dadurch, dab bei den 
Psittaci verhältnismäßig so zahlreiche Davaineen zu treffen. 

Die Coceygiformes (Cuculi) sind noch sehr wenig untersucht, 
d.h. man hat nur bei 8 Arten Cestoden gefunden, die überhaupt 
bei diesen Vögeln selten zu sein scheinen. 7 Arten konnten 


16 OÖ. FuHrMmAnN, 


in die entsprechenden Genera eingereiht werden, sie gehören den 
Gattungen Davainea, Anomotaenia und Fymenolepis an. 

Die Coraciiformes scheinen nicht sehr scharf abzutrennen 
zu sein von den Passeriformes. GAapow bezieht in die Coraciiformes 
die Striges, Coraciae, Caprimulgi, Cypseli, Colii, Trogones und Pici, 
während FÜRBRINGER nur die Striges, Coraciae (s. str.) und Caprimulgi 
hierher rechnet, die Pici, Cypseli und Colii dagegen zu den Passeri- 
formes stellt. Die Trogonidae stehen im FÜRBRINGER'schen Stamm- 
baum zwischen Coraciiformes und Pico-Passeriformes. 

Von den Coraciae in Gapow’schem Sinne sind als Halyconi- 
formes die Alcedinidae, Meropidae, Upupidae, Bucerotidae und Haly- 
conidae abgetrennt und den Pici genähert. 

Sehen wir nun an Hand der Cestoden-Fauna dieser Vogelgruppen, 
ob die eine oder andere Ansicht der beiden Autoren eine Be- 
stätigung findet. 

Was zunächst die Strigiformes anbetrifft, so besitzen dieselben eine 
sanz besondere ihnen eigne und nur aus 2 sichern Arten zusammen- 
gesetzte T’aenien-Fauna. Dieselbe zeigt, und dies ist hier interessant 
hervorzuheben, nicht die geringste Gemeinschaft mit derjenigen der 
Tagraubvögel, obwohl die Nahrung der Vertreter dieser beiden 
Vogelgruppen, wie schon oben bemerkt, oft eine ganz identische ist, 
ein Beweis, daß nicht nur die Ernährungsweise bestimmend ist für 
die Zusammensetzung der Öestodenfauna einer Vogelgruppe. 

Aus den Coraciae kennen wir nur eine, dazu noch unbeschriebene, 
von v. Lisstow benannte Taenie, welche, wie ich aus dem Original- 
material ersehen konnte, eine Hymenolepis-Art ist. 

Bei den Caprimulgi finden sich etwa 8 typische Species, ebenso 
haben die Bucerotes 2 für sie typische Arten, während dagegen die 
Upupidae und Meropidae neben ganz wenigen eignen Arten Mono- 
pylidium crateriforme (GoEZE) (?) mit den Pici gemeinsam zu haben 
scheinen (s. 8. 7). Bemerkenswert ist, daß in Bucerotes eine Anoplo- 
cephalide und in Merops eine Biuterina-Art vorkommt. 

Bei den Pici sehen wir wie bei den obigen Gruppen eine eigene 
Cestodenfauna ebenfalls aus wenigen Arten zusammengesetzt, von 
welcher nur M. crateriforme, wie oben bemerkt, in Upupidae und 
Meropidae vorkommen soll. 

Die Angabe dagegen, daß die für Pici typische und weitver- 
breitete Davainea frontina (Dus.) auch in Oriolus vorkommt, ist sicher 
unrichtig, wie ich mich selbst überzeugen konnte. Die Davainea 
frontina aus Oriolus ist eine andere, kürzlich von Cuerc beschriebene 


Die Cestoden der Vögel. lm 


besondere Species. Ebenso ist die Angabe Linstow’s von Aymeno- 
lepis serpentulus aus Dendrocopus wohl ein Irrtum. Die Pici zeigen 
übrigens eine ganz typische Zusammensetzung ihrer Cestoden-Fauna, 
indem eine Anoplocephalide und, was besonders auffallend, 5 Arten 
von Davainea bei diesen Vögeln vorkommen. 

Während Gapow die Pici zu den Coraciiformes stellt, bringt sie 
FÜRBRINGER, wie schon gesagt, mit den Passeriformes zusammen, 
was nach der Parasiten-Fauna zu schließen das Richtigere zu sein 
scheint, da die Pieci-Passeres gewisse Cestoden-Genera gemeinsam 
haben, welche den eigentlichen Coraciformes fehlen. Ebenso scheint 
die Disposition des FÜHRBRInGErR’schen Stammbaumes der Vögel, 
welcher die Haleyoniformes (Meropidae, Upupidae, Bucerotidae) den 
Piei nähert, den helminthologischen Verhältnissen entsprechender als 
die Klassifikation GApow’s. Dies gilt namentlich auch für die 
Macrochires (Oypselidae und Trochilidae), welche nach Gapow Coraci- 
formes, nach FÜRBRINGER Passeriformes sind. Auch hier spricht 
die Taenien-Fauna noch viel deutlicher als bei den obigen Gruppen 
für eine Vereinigung mit den Passeriformes. In der Tat haben die 
Cypseliden einige Taenien-Arten mit den Hirundinidae gemein- 
sam; es sind dies: Anomotaenia cyathiformis, Anomotaenia vesiculigera 
und Taenia depressa. Die Nahrung der Caprimulgi, Cypseliden und 
Hirundiniden ist ganz dieselbe, trotzdem zeigen die Caprimulgiden 
eine ganz andere Taenien-Fauna als die beiden andern Gruppen. 
Die Zahl der Taenien-Arten ist bei den Hirundinidae bedeutend 
gröber als bei den Uypselidae. 

Was nun die Trochilidae anbetrifft, so kennen wir bis jetzt nur 
einen Vertreter des Genus Anonchotaenia, welches Genus bei den Coraci- 
formes nirgends vorkommt, wohl aber bei den Passeriformes ver- 
breitet ist und auch bei den Nectarinidae gefunden wurde. 

Aus Colüdae, Alcedinidae, Todidae und Momotidae kennen wir 
leider keine Taenien. 

Von den Pieci-Passeriformes haben wir die von GAnow zu den 
Coraciiformes gestellten Pici, welche von besonderen Cestoden-Arten 
bewohnt, bereits besprochen. Die Passeriformes sind eine überaus 
homogene, artenreiche Gruppe, in welcher sich aber trotzdem mehrere 
ziemlich scharf getrennte Taenien-Faunen erkennen lassen, und deren 
Trennung wäre vielleicht eine noch schärfere, wenn die Angaben 
der Autoren etwas zuverlässiger wären. Sehr viele Arten sind so 
mangelhaft beschrieben, daß sie nicht mehr zu erkennen und nicht 


in bestimmte Genera gesetzt werden können. Andrerseits ist zu er- 
Zool. Jahrb., Supplement X. 2 


[7 


pP; 


18 0. FuHrmann, 


wähnen, daß in Passeriformes nur verhältnismäßig selten Taenien 
gefunden werden. Unsere Kenntnisse sind übrigens in dieser Gruppe 
ganz besonders lückenhaft, wenn man bedenkt, dab von ca. 7000 
Arten von Passeriformes nur aus ca. 150 Arten Vogelcestoden be- 
kannt sind. Aus diesen Gründen will ich hier nicht näher auf die 
Verteilung der 85 Taenien-Arten in den verschiedenen Familien der 
Passeriformes eingehen und verweise auf das Kapitel, welches die 
Zusammenstellung der Vogelarten und ihre Taenien enthält. 


Die geographische Verbreitung der Vogelcestoden. 


Die geographische Verbreitung der Vogelcestoden-Arten ist in 
erster Linie abhängig von derjenigen ihres Wirtes oder ihrer Wirte 
und ist mit derselben mehr oder weniger identisch. Leider sind 
unsere Kenntnisse in dieser Hinsicht noch sehr unvollständig, da wir 
eine bestimmte Taenien-Art eines gewissen Vogels oder einer Vogel- 
gruppe meist nur von einem Orte oder einer ganz geringen Zahl 
von Lokalitäten kennen, da die Vögel nur selten und ausnahmsweise 
auf ihre Cestoden untersucht werden. 

Nach den Untersuchungen von E. LÖNNBERG scheint es, als ob 
in einem bestimmten Lande (in diesem Falle Norwegen und Schweden) 
gewisse Taenien-Arten nur bestimmte Gebiete bewohnen, während 
sie an andern Orten desselben Landes bei denselben Vögeln sehr 
selten sind, ganz fehlen oder durch andere Arten ersetzt werden. 

Bei unserer Betrachtung der geographischen Verbreitung der 
Vogeltaenien wollen wir nicht auf die Frage der Verteilung einer 
Parasiten-Art innerhalb eines Landes eingehen, da, wie gesagt, das 
Material zur Beantwortung dieser Frage noch viel zu gering und 
auch von geringerm Interesse als die Beantwortung der Frage der 
Verteilung der Cestoden-Arten nach den verschiedenen Erdteilen 
oder Tiergebieten der Erde ist. 

Die Kenntnis der Vogelcestoden-Fauna ist nun aber leider keine 
gleichmäßige, und wir kennen wenigstens einigermaßen nur die 
Vogelcestoden von Europa und Nord-Afrika sowie diejenigen von 
Südamerika. Süd-Afrika, Asien, Australien und Nordamerika sind 
noch wenig untersucht und die bekannten Daten noch zu vereinzelt, 
um Schlüsse ziehen zu können. Wir haben einige sehr unvollständige 
und wenig zuverlässige Angaben über Nordamerika sowie ganz 
mangelhafte und unbrauchbare Angaben über Australien, mit welchen, 
bevor die betreffenden Materialien einer Neuuntersuchung unter- 


Die Cestoden der Vögel. 19 


worfen, nichts anzufangen ist. Aus Süd-Afrika und Asien sowie 
aus den zahlreichen Inselgruppen des Indischen und Pazifischen Ozeans 
existieren nur ganz vereinzelte Angaben. Unsere Betrachtung der 
geographischen Verbreitung der Cestoden wird daher namentlich ein 
Vergleich sein zwischen der Vogelcestoden-Fauna Europas und Süd- 
amerikas. Dieser Vergleich ergibt interessante Tatsachen, welche 
eine gründlichere Kenntnis der Cestoden-Fauna der übrigen Erdteile 
sehr wünschenswert machen. 

Wir wollen in den nachfolgenden Zeilen die geographische Ver- 
breitung der Taenien der einzelnen Vogelgruppen nacheinander be- 
trachten. 

Über die geographische Verbreitung der Cestoden der Struthioni- 
formes, Rheiformes, Casuariformes und Apterygiformes 
ist bei den engen Verbreitungsgebieten dieser Vögel nichts Besonderes 
zu bemerken. Auffallend und, wenn richtig, höchst interessant ist, 
wie schon bemerkt, nur die Tatsache, daß der amerikanische Strauß 
die typische Davainea struthionis des afrikanischen Strauß beherbergen 
soll. Diese Tatsache weist vielleicht auf das viel umstrittene ant- 
arktische Schöpfungszentrum hin. 

Die von uns untersuchten Cestoden der Urypturiformes 
stammen alle aus Brasilien und sind ganz typisch für diese Vogel- 
gruppe. 

Bei den Galliformes sind zunächst die Hausvögel ganz auber 
Betracht zu lassen, und dann finden wir, dab die in bezug auf 
Helminthen wenig bekannten südamerikanischen Hühnervögel keine 
einzige der zahlreichen europäischen Cestoden derselben Vogelgruppe 
beherbergen. 

Die Cestoden der Ralliformes, Gruiformes und Otidi- 
formes lassen aus Mangel an Daten keinen Vergleich zu. 

DieCharadriformessind namentlich in Europa parasitologisch 
gut untersucht, und aus Südamerika kennen wir 17 Taenien-Arten 
dieser Vögel, von welchen 9 auch in europäischen Vertretern dieser 
Vogelgruppe vorkommen, was bei der weiten Verbreitung gewisser 
Arten nicht zu verwundern ist. 

Die Lariformes zeigen eine weite geographische Verbreitung; 
es sind übrigens nur in Europa Larus-Arten auf Taenien unter- 
sucht worden. 

Die Vertreter der Columbiformes von Neuguinea sowie 
von den Carolinen, dem Bismarckarchipel und den Nicobaren zeigen 


auf jeder dieser Inselgruppen, soweit unsere jetzigen Kenntnisse 
2* 


20 O0. Funrmann, 


reichen, besondere Taenien, welche mit denjenigen der Tauben 
Europas und Afrikas nichts gemein haben. Aus südamerikanischen 
Tauben kenne ich keine Taenien. 

Von den Podicipediformesist außer mehreren europäischen 
nur eine südamerikanische Art untersucht, welche von 5 in ihr 
hausenden Arten 4 für sie typische Species aufweist. Bei Procellari- 
formes, Aptenodytiformes und Steganopodes ist mit den 
bis jetzt bekannten Daten kein Vergleich möglich. 

In den Ciconiiformes Europas und Südamerikas hausen je 
16 Taenien-Arten, von welchen keine gemeinsam ist. 

Ebenso zeigen die Accipitres dieser beiden Kontinente eine 
ganz scharfe Trennung der Cestoden-Arten und sind sogar die 
Taenien-Genera ganz verschieden. (Aus Europa sind 4 Arten, aus 
Südamerika 7 Arten bekannt.) 

Die Anseriformes zeigen eine weite geographische Ver- 
breitung ihrer Arten; es sind übrigens meist nur europäische Arten 
untersucht, auch manche der untersuchten außereuropäischen Arten 
stammen aus zoologischen Gärten unseres Kontinents, sodaß eine 
Vergleichung der geographischen Verbreitung der Taenien-Arten zu 
keinem sichern Resultat führte. 

DiePsittaciformes der Molukken, Neuguineas und Australiens, 
Südamerikas und Afrikas zeigen verschiedene Taenien-Faunen, und 
nur Davainea leptosoma aus südamerikanischen Papageien scheint 
auch in Afrika vorzukommen, was aber noch der Bestätigung bedarf. 

Bei den Coraciiformes und Passeriformes ist ein Ver- 
gleich schwierig, weil einerseits meist nur europäische Arten unter- 
sucht, und da, wo es sich um amerikanische Arten handelt, sind es 
Vertreter von Familien, welche in Europa nicht vorkommen und 
die deshalb ihre eigne ganz verschiedene Taenien-Fauna besitzen. 
Dann ist auch die Bestimmung der Cestoden-Arten in dieser Vogel- 
sruppe eine ganz besonders unsichere, so dab sich nur ganz all- 
gemein sagen läßt, daß die Cestoden-Fauna der Coraciiformes und 
Passeriformes Europas und Südamerikas eine sehr verschiedene und 
nur ganz wenige Species beiden Erdteilen gemeinsam scheinen, viel- 
leicht aber bei genauerer Kontrolle gar keine gemeinsamen Arten 
existieren. 

Aus Striges kennen wir nur 2 Arten von Taenien, die eine 
europäisch, die andere südamerikanisch. 

Überblicken wir nun die gegebene zoogeographische Übersicht 
der Taenien der verschiedenen Vogelgruppen, so sehen wir eine 


Die Cestoden der Vögel. an 


bemerkenswerte scharfe Trennung der Artvertretung der Vogel- 
cestoden namentlich zwischen Europa und Südamerika, von wo wir 
die meisten Daten besitzen. Aber auch die verschiedenen Insel- 
gruppen Polynesiens zeigen ganz bestimmte Vogelcestoden-Faunen. 

Dr. v. Iserme (1902) hat in seinem Aufsatz „Die Helminthen 
als Hilfsmittel der zoogeographischen Forschung“ folgende Sätze 
aufgestellt, die ich in extenso hier wiedergebe, um sie einer nähern 
Betrachtung zu unterziehen: 

1. „Die Landtiere werden durch die Wanderungen. auch die 
ausgedehntesten nicht ausgeschlossen, von ihren Helminthen nicht 
befreit, weil die als Zwischenwirte dienenden niedern Tiere überall 
auf Erden unter sonst gleichen Bedingungen analoge Verhältnisse 
aufweisen; wenn auch in den neuen Wohngebieten zum Teil andere 
Parasiten hinzukommen, bleiben doch die alten Verhältnisse zum 
großen Teil unverändert bestehen, wie dies besonders in Süd- 
amerika auffällig ist, wo die holarktischen Helminthen nicht bei 
den autochthoven, sondern nur bei den heterochthonen, spät ein- 
gewanderten Säugetieren und Vögeln angetroffen werden.“ 

2. „Unter diesen Umständen gestaltet sich die Helminthologie 
zu einem wertvollen Hilfsmittel für die analytische Methode der 
Zoogeographie, von welchem man sich wichtige Dienste, namentlich 
auch bei solchen Gruppen behufs Ermittlung ihrer Geschichte ver- 
sprechen darf, für welche nicht genügend geologische Daten vor- 
liegen resp. der Natur der Sache nach nicht erwartet werden können.“ 

3. „Die Helminthologie in diesem Sinne aufgefaßt, wird sie auch 
Gegenstand der paläontologischen Forschung, indem die Beziehungen 
der Helminthen zu ihren Wirten, zu deren Wanderungen und zu 
ihrem geologischen Alter es gestatten, über das Alter der einzelnen 
größern Gruppen, ja selbst Gattungen und Arten, exakten Aufschluß 
zu gewinnen.“ 

v. IHERING stützt sich zur Aufstellung dieser Sätze auf die 
Acanthocephalen der Säugetiere und Vögel. Ein genaues Studium 
dieser Parasiten bei Vögeln hat aber gezeigt, dab unter allen 
Helminthen keine Gruppe so wenig geeignet ist wie diese, obige 
Sätze zu stützen. Da dieselben also auf die Acanthocephalen basiert, 
stehen sie auf sehr schwachen Füßen. 

Die Echinorhynchen zeigen nämlich die bei Helminthen seltne 
Eigentümlichkeit, daß ein und dieselbe Art in den Vertretern der 
verschiedensten Säugetier- und Vogelgruppen vorkommen kann. So 
finden wir, um nur 2 Arten, welche auch v. Iserıng, aber unter 


22 O0. Fuvurmann, 


anderm Namen, zitiert, anzuführen, Hehinorhynchus buteonis (G0EZE 
in Aceipitres, Striges, Ciconiiformes, Coceygiformes, Charadriiformes 
und Passeriformes; Gigantorhynchus compressus Run. dagegen wurde 
in Aceipitres, Coraciiformes, Passeriformes, Charadriiformes, Grui- 
formes, Urypturiformes und Rheiformes gefunden. 

Es liegt auf der Hand, daß Parasiten, welche sich so wenig 
um die systematische Stellung ihres Wirtes kümmern, keinen tier- 
geographischen Wert haben können, und ebensowenig aus ihrem 
Vorkommen geologisch-paläontologische Schlüsse gezogen werden 
dürfen. 

Die Wichtigkeit der von v. IHERING aufgestellten Sätze verlangt, 
daß ich zunächst näher auf seine als Beweise seiner Ansicht gegebenen 
parasitologischen Angaben eingehe. Ich beschränke mich dabei auf die 
Vogelacanthocephalen, weil uns hier die Vögel speziell interessieren und 
weil durch L. DE MARVAL !) auf Grund des Studiums eines reichen Materials 
von Typen eine Monographie der Acanthocephalen der Vögel herausgegeben 
wurde, welche uns hier sehr zu statten kommt. 


Aus den autochthonen Vögeln Brasiliens führt v. IHERING 
folgende Acanthocephalen an: 
Gigantorhynchus spira DIES. in Gypagus und Cathartes 
Gigantorhynchus taeniordes DIES. in Oariama 
Echinorhynehus vaginatus DIES. in Pteroglossus, Rhamphastus, Rupieola 
Echinorhynchus retieulatus WESTR. in Limnopordalis und Porzana 
Echinorhynchus galbulae WESTR. in Galbula 
Echinorhynchus dendrocopi WESTR. in Atpholaptes 
Echinorhynchus tanagrae Rup. in Tanagra 
Echinorhynchus orioi RUD. in Ostinops ; 


aus heterochthonen Vögeln zitiert er: 


Echinorhynehus inscriptus WESTR. in Turdus 

Echinorhynehus striatus GÖZE in Ardea, Tanlalus, Platalea und Ceryle 

Echinorhynchus sphaerocephalus BREMS. in Larus 

Eehinorhynchus emberizae Rup. in Zonotrichia und Pseudochloris 

Eehinorhynehus lagenaeformis WESTR. in Urubitinga, Busarellus und andern 
Aceipitres 

Echinorhymehus caudalus Zep. in Polyborus, Aceipiter und andern Aceipitres 

Eehinorhymehus tumidulus RuD. in Crotophaga und ÜOoceyrus 

Vchinorhynehus oligocanthoides Run. in Busarellus und Harpagus. 


Hierzu bemerkt v. IHERING, daß sich aus den mitgeteilten Listen 
ergibt, daß bei den höhern autochthonen Landtieren Südamerikas durchweg 
nur besondere, ihnen eigentümliche Arten von Acanthocephalen angetroffen 
werden, während bei den heterochthonen Formen neben besondern Arten 


1) L. ps MAarvAr, Monographie des Acanthocephales d’oiseaux, in: 
Rev. Suisse Zool., Vol. 13, 1905, 190 p., 4 pl. 


Die Cestoden der Vögel. 23 
von Acanthocephalen auch solche vorkommen, welche eine weitere Ver- 
breitung besitzen. Von den unter den autochthonen Vögeln angeführten 
Eehinorhynchen-Arten ist nur Ech. vaginatus Dies. eine für Südamerika 
typische Art, welche, wie DE MARVAL bemerkt, soviel nach dem schlecht 
erhaltenen Original zu urteilen, dem weitverbreiteten ch. miceracanthus 
sehr nahe steht. 

G. spira DiES. und faenioides DIES. sind, wie die Untersuchung des 
Originalmaterials gezeigt hat, verschiedene Altersstadien des weitverbreiteten, 
auch in Europa in Raben ete. vorkommenden (7. compressus.  Ech. reti- 
eulatus kommt auch in der alten Welt vor. Die 4 nachfolgenden Arten 
sind ganz wertlos, denn von ihnen bestehen weder Beschreibungen noch 
die Originale, und ich kann deshalb nicht begreifen, wie v. IHERING diese 
zu streichenden Arten als Stütze für seine Ansicht vorbringen kann. KEech. 
orioli Run. (partim.) soll wahrscheinlich identisch sein mit dem auch in 
Europa gefundenen Zeh. areolatus RuD. 

Von den aus heterochthonen Vögeln Südamerikas bekannten Echino- 
rhynchen sagt v. IHERING, daß Ech. sphaerocephalus, Ech. striatus, Ech. 
caudatus und Ech. lagenaeformis (syn. Ech. compressus) in Europa und 
Brasilien vorkommen. Die 4 folgenden Arten, die Brasilien eigen sein 
sollen — es sind dies Kch. insceriptus (syn. Ech. areolatus), Ech. tumidulus 
(syn. Ech. buteonis), Ech. oligocanthoides (synonym den bereits oben zitierten 
Ech. lagenaeformis, Ech. compressus, Eech. spira und KEch. taenioides) — 
kommen aber ebenfalls in Europa vor. Ech. emberizae Ru». ist dagegen 
eine unbeschriebene, zu streichende Art. Also finden wir in allen auto- 
chthonen nur eine (noch dazu nicht ganz sichere), in allen heterochthonen 
Vögeln keine sichere typische brasilianische Art! 

Bei den Säugetieren würde wohl dasselbe zu konstatieren sein, wenn 
wir die Echinorhynchen derselben etwas gründlicher kennten. Daß 
vielleicht die zitierten Edentaten und Marsupialier besondere Echino- 
rhynchen haben, ist nicht zu verwundern, da sie ganz besondere nur in 
Südamerika und Australien vorkommende Säugetiergruppen sind, von 
zoogeographischem Wert ist; aber diese Tatsache einstweilen gar nicht. 


Die oben zitierten Sätze v. IHerıng’s finden, wie in der Fußb- 
note des nähern gezeigt, in dem von ihm angeführten Tatsachen- 
material nicht die geringste Stütze, sie scheinen das Geeenteil zu 
beweisen und dies eben, weil der Verfasser sich auf Helminthen 
stützt, welche sozusagen bei jedem Vertreter einer Wirbeltierklasse 
gedeihen und sich entwickeln können und nur sehr wenig speziali- 
siert sind in bezug auf ihren Wohnsitz. 

Ganz anders liegen die Verhältnisse bei den andern Helminthen 
und ganz speziell bei den Cestoden. 

Z/SCHOKKE!), auf Grund der von v. IHERING gemachten Ausein- 

1) F. ZSCHOKKE, Die ÜCestoden der südamerikanischen Beuteltiere, 


in: Zool. Anz., Vol. 27, 1904 und Die Darmcestoden der amerikanischen 
Beuteltiere, in: Ctrbl. Parasitol., Vol, 36, 1904. 


24 O0. Funrnmann, 


andersetzungen, die, wie er sagt, „von Zoogeographischer und phylo- 
genetischer Bedeutung sind“, unterzieht die Cestoden-Fauna einiger. 
Aplacentalier einer näheren Betrachtung. 

Hier liegen nun die Verhältnisse ganz anders als bei den 
Acanthocephalen, indem bei Cestoden sich eine sehr scharfe Speziali- 
sierung der Arten auf bestimmte Wirte und Wirtsgruppen zeigt. 
Daß die Marsupialier und Monotremen für sie typische Cestoden- 
Arten besitzen, welche nur bei ihnen anzutreffen, hat, wie schon 
oben bemerkt, nichts Verwunderliches und findet sich diese Er- 
scheinung auch bei allen übrigen Säugetiergruppen, zeigt sich aber noch 
viel deutlicher bei den Vogelcestoden, welche eine viel reichere 
Cestoden-Fauna haben und welche wir in dieser Hinsicht bedeutend 
besser kennen. 

Es ist die Spezialisierung des Wohnsitzes eine für die Taenien 
charakteristische Erscheinung, und zugleich könnte man diese Tat- 
sache als einen systematischen Chärakter der betreffenden Wirbel- 
tiergruppen auffassen, wie es die morphologischen und anatomischen 
Genus und Familienmerkmale derselben sind. Ob denselben aber immer 
wichtige zoogeographische Bedeutung zukommt, ist keineswegs 
sicher. Anders wäre es, wenn die Cestoden-Fauna einer Säugetier- 
gruppe in zwei verschiedenen Kontinenten, z. B. Australien und 
Südamerika. generell verschieden wäre. Dies ließe darauf schließen, 
daß die betreffenden Vertreter der beiden Kontinente schon sehr 
lange scharf getrennt und sich deshalb neue typische Üestoden-. 
Genera herausbilden konnten. Wir konstatieren aber in fast allen 
derartigen Fällen, daß nur die Arten verschieden, nicht aber die 
Genera, was aber in den obigen Fällen nicht etwa auf eine relativ 
junge Trennung der Kontinente hinweist, wie v. IHERING und 
ZSCHOKKE glauben. 

Es kann ferner die Tatsache, daß eine Säugetiergruppe und 
dazu noch eine so typische, geographisch eng begrenzte wie die Marsupi- 
alier ein bestimmtes Cestoden-Genus beherbergt, nicht von zoogeo- 
graphischer Bedeutung sein und zoogeographische Schlüsse erlauben 
oder begründen, um so mehr, als wir bei der mangelhaften Kenntnis 
der Cestoden-Fauna jener Länder nicht wissen, ob die betreffende 
Cestoden-Gattung wirklich so charakteristisch ist. Die von uns als 
Linstowia lata (aus Numida ptilorhyncha) beschriebene Art, welche 
ZSCHOKKE mit Recht als nicht in dieses Genus gehörig betrachtet, 
zeigt auf jeden Fall zahlreiche gemeinsame Charaktere mit Zinstowia 
und läßt es möglich erscheinen, daß wir auch anderwärts außerhalb 


Die Cestoden der Vögel. 35 


der Marsupialia bei andern Säugetieren oder sogar bei gewissen 
Vogelgruppen Vertreter dieses Genus treffen werden. Auch Moniezia, 
Bertia, Cittotaenia wurden als für gewisse Säugetiergruppen charakte- 
ristisch angesehen, bis ich für diese Genera nachweisen konnte, daß 
sie auch in Vögeln ihre Vertreter haben. 

Oochoristica, das zweite für die Marsupialier von ZSCHORKE in 
Betracht gezogene Genus, ist eine durch die Mannigfaltigkeit der Wirte 
charakteristische Gruppe, welche nicht nur in Marsupialiern, sondern 
auch in Edentaten, im Dachs, in Affen und in Eidechsen ihre Ver- 
treter hat und so zoogeographisch überhaupt unbrauchbar ist. 

Wir müssen in zoogeographischen Schlüssen aus der Hel- 
minthen-Fauna sehr vorsichtig sein und eine bessere Kenntnis 
der Parasiten-Fauna abwarten und anstreben. Wenn wir einmal 
die Helminthen-Fauna der verschiedenen Kontinente annähernd so 
gut kennen wie deren Vertebraten-Fauna, d. h. wenn die Forschungs- 
reisenden ihr Interesse nicht nur auf das Sammeln von Vogel- und 
Säugetierbälgen und -Skeleten beschränken, sondern gleichzeitig 
auch deren Parasiten sammeln, wie dies in jüngerer Zeit geschieht, 
so werden gewib interessante zoogeographische, systematische und 
sogar phylogenetische Resultate nicht nur für die Helminthen, 
sondern auch für deren Wirte sich ergeben. 

Da wir die reiche Cestoden-Fauna der Vögel von Europa, Nord- 
Afrika und Südamerika bereits ziemlich gut kennen, ließen sich aus 
dem am Schlusse dieser Arbeit gegebenen faunistischen Kapitel be- 
reits einige interessante T’atsachen herauslesen, welche in den vor- 
hergehenden Zeilen bereits z. T. angedeutet sind, die aber gründlich 
zu beantworten der Zeitpunkt noch nicht gekommen ist. 

Nur zwei parasitologisch und zoogeographisch höchst inter- 
essante Tatsachen in bezug auf die Taenien der Vögel will ich hier 
nochmals hervorheben. Der erste Fall betrifft das von mir konsta- 
tierte Vorkommen von Davainea struthionis in Struthio und in Rhea 
americana (s. 0. 8.6). Es würde sich hier gewiß lohnen, eine große 
Zahl von Exemplaren von Zühea verschiedener Lokalitäten Süd- 
amerikas zu untersuchen, um zu sehen, ob der obengenannte 
Cestode wirklich vorkommt; wenn ja, wäre dies gewiß von grober 
zoogeographischer Bedeutung. 

Der zweite Fall betrifft die generelle und nicht nur artliche 
Verschiedenheit der Cestoden-Fauna der Accipitres Europas und 
Südamerikas, die verschiedene Erklärungen zuläßt. 

Würden wir die Phylogenese der Cestoden besser kennen, so 


26 OÖ. FUHRMANN, 


könnten wir vielleicht aus dem Präponderieren eines primitiven, 
phylogenetisch ältern Taenien-Genus bei geographisch getrennten 
Arten derselben Vogelgruppe Schlüsse ziehen, welches der Ent- 
stehungsort, der ursprünglichere Wohnort der betreffenden Vogel- 
gruppe ist. So könnte also nicht nur in der von v. IHERING richtig 
angedeuteten, aber mangelhaft begründeten Richtung wichtige 
Dienste von der Helminthologie zu erwarten sein. 


Il. Systematischer Teil. 


Die Systematik der Uestoden der warmblütigen Vertebraten der 
Cyelophyllidea war und ist auch jetzt noch eine sehr mangel- 
hafte, und alle Versuche mit Ausnahme der systematischen Zu- 
sammenstellunge von M. Braun (in: Bronx, Klassen und Ordnungen 
des Tierreichs) sind kaum einer Diskussion wert, da sie infolge der 
damals äußerst unvollständigen anatomischen Kenntnisse nahe ver- 
wandte Gruppen trennen und anatomisch total Verschiedenes zu- 
sammenfassen. 

M. Braun war der erste, der gestützt auf das Studium der ge- 
samten Literatur eine Klassifikation der Cyclophylliden gab, welche 
hier genau wiedergegeben und diskutiert werden soll, um dann eine 
in manchen Punkten veränderte Einteilung dieser Cestoden-Ordnung 
aufzustellen, welche sich stützt auf die eigne anatomische Unter- 
suchung von mehr als 51 Genera. So glaube ich eine etwas bessere 
(Gruppierung der seit Braun’s Versuch bedeutend vermehrten Cestoden- 
(senera geben zu können. 

Max Braun teilt die Uyclophylliden folgendermaßen ein: 


Ordn. Cyclophyillidea van Ben.!) 


l. Fam. Taentidaee Lupw. 
Subfam. Mesocesioidinae STOSS. 
Gatt. Mesocestordes VAILL. 8. 
Subfam. Acoleinae FUHRM. 
a) Gyrocoelia FUHRM. \. 
b) Acoleus FuUHRM. V\. 
Anhang: ce) Diploposthe JacoBI. \V. 
d) Dioicocestus FUHRM. VW. 


1) Hinter den Gattungsnamen habe ich durch S, V, R, A angegeben, 
ob nach den Angaben von Braun das Genus Vertreter in Bäuge- 
tieren, Vögeln, Reptilien und Amphibien besitzt. 


Die Cestoden der Vögel. 


Subfam. Amabilünae. 
e) Amabilia Dıam. V. 
Subfam. Copesominae RAILL. 
f) Oopesoma SINITZz. V. 
g) Trichocephalordes SINITZ. 
Subfam. Tetrabolhriinae. 
Gatt. Tetrabothrius Rup. 8, V. 
Subfam. Anoplocephalinae R. BLANCH. 
Gatt. Anoplocephala E. BLANCH. 
„ Andrya RaıLL. 8. 
„  Bertia R. BLAncH. 8. 
„  Linstowia ZscH. S8. 
„  Stiesia RaILL. 8. 
„  Thysanosoma Dies. 8. 
„  Oittotaenia RiEHM. 8, V? 
„  Moniezia R. BLAncH. 8. 
Subfam. Dipylidünae RAILL. 
Gatt. Dipylidium LxH. 8. 
„  Cotugmia Dıam. V. 
„ Oochoristica LÜHE. R. 
„ Panceria Sons. R. 


„ Monopylidium FUHRMANN. V. 


V. 


„  Hymenolepis WEINLAND. 8, V. 


1. Subgen. Hymenolepis s. str. 


2. Subgen. Drepanidotaenia RAILL. V. 


Gatt. Diiepis WEINL. V. 
„  Choanotaenia RAILL. V. 
„  Amoebotaenia CoHn. V. 
„  Nematotaenia LÜHE. A. 


SV: 


Subfam. Davarneinae. 


Gatt. Davainea R. BLANCH 


SW. 


„ Eehinocotyle R. BLANcH. VW. 


„ Ophryocotyle FRIS. 


V. 


Anhang: a) Fimbriarüdae WOLFFH. \. 


b) Idiogenes KRABBE. 


Subfam. Tueniinae PERRIER. 
Gatt. Taenia Linnk. 8. 


V: 


Dieser Wiedergabe des Brauv’schen Systems will ich sofort das 
meinige folgen lassen und dabei auch die Wohnorte der Vertreter 
dieser Genera nach dem heutigen Stande unserer Kenntnisse an- 


geben: 


1. Fam. Tetrabothrüdae (BRAUN). 


l. Gatt. Tetrabothrius RuUD. 


2. Fam. Mesocestoididae (STOSS.). 


SV. 


2. Gatt. Mesocestoides VAILLANT. 8, V. 


3. Fam. Anoplocephalidae (R. Bu.). 


28 OÖ. FuUHRMAnN, 


l. Subfam. Anoplocephalinae FUHRMANN. 
3. Gatt. Anoplocephala E. BLANcH. 8. 

„ Berta R. BLancHh. 8, V. 

„  Andrya RaıLL. 8. 

„  Oitlotaenia RiEHm. S, V. 

„  Moniezia BLANcH. 8, V. 

„ Schizotaenia JANICKI. S8. 

„  4Aporina FUHRMANN. V. 
10. ,„  Triplotaenia BoAs. 8. 

2. Subfam. Linstowinge FUHRMANN. 
11. Gatt. Linstowia ZSCHOKKE. N. 
12. Gatt. Zschokkea FUHRMANN. V\. 

3. Subfam. Thysanosominae FUHRMANN. 
13. Gatt. Thysanosoma DIES. 8. 
14. Gatt. Stilesia RAILL. S8. 


' 4. Fam. Davaineidae FUHRMANN. 

1. Subfam. Ophryocotylinae FUHRMANN. 
15. Gatt. Ophryocotyle Frııs. V. 

2. Subfam. Davaineinae BRAUN. 
16. Gatt. Davainea BLANCH. S, V. 
17. „  Polycoelia FUHRMANN. V. 
18. ,„  Cotugnia Dıam. V. 

3. Subfam. Idiogeninae FUHRMANN. 
19. Gatt. Idiogenes KRABBE. V. 
20. Gatt. Ohapmania (MONTICELLI) FUHRMANN. VW. 

5. Fam. Dilepinidae FUHRMANN. 

1. Subfam. Dilepininae FUHRMANN. 
21. Gatt. Dilepis WEINLAND. V. 
22. „ Trichocephaloides SINITZINE. \. 
23. ,„  Lateriporus FUHRMANN. V. 
24. ,„  Chonnotaenia RAILLET. V, 8.!) 
25. ,„ Anomotaenia Conn. V, 8.?) 
26. „ Fuhrmannia PARoONA. VW. 
27. „  Leptotaenia Con. \V. 
28. „ Amoebotaenia CoHN. V. 
29. „ Liga WEINLAND. VW. 
30. ,„ FParvirostrum FUHRMANN. V. 
31. „  Cyelustera FUHRMANN. V\. 
32. „  Laterotaenia FUHRMANN. VW. 


ernpour 


1) CHoLODKOWSKY (1906) beschreibt eine Tuenia aus Sorex, die er 
Monopylidium sorieinum CHOLOD. benennt, welche mir aber nach Be- 
schreibung und Abbildung (fig. 38) fast sicher eine ('hoanotaenia zu sein 
scheint. So würde also das Genus O'hoanotaenia und nicht Monopylidium 
auch in Säugetieren vorkommen. 

2) Ebenso ist die Amoebotaenia subterraneas CHOLOD. aus Sorex des- 
selben Autors nicht eine Amoebotaenia, sondern eine Anomotaenra. 


Die Cestoden der Vögel. 29 


33. Gatt. Proorchida FUHRMANN. V\. 
San 2 Angularıa Ciarc. N: 
35. „  Oyelorchida FUHRMANN. V. 
36. „  Acanthocirrus FUHRMANN. V. 
37. „  Cladotaenia CoHnn. 8. 
2. Subfam. Dipylidiinae RAILLET. 
38. Gatt. Dipylidium LEUCKART. 8, V. 
39. „  Monopylidium FUHRMANN. VW. 
40. „ Obochoristica LÜHE. S, R. 
41. „ FPanceria Sons. R. 
3. Subfam. Paruterinae FUHRMANN. 

42. Gatt. Paruterina FUHRMANN. V. 
43. ,„  Biuterina FuUHRMANN. VW. 
44. ,  Ouleitella FUHRMANN. X. 
45. ,,  Rhabdometra CHOLODK. V. 
46. .,  Metroliasthes RAnSOMm. \. 
47. ,, Anonchotaenia CoHN. X. 
48. ,, Nematotaenia LÜHE. A. 

6. Fam. Hymenolepinidae FUHRMANN. 
49. Gatt. Oligochis FUHRMANN. V. 
50. ,„,  Hymnolepis WEINLAND. 8, V. 

Subgen. Echinocotyle BLANCHARD. V\. 

Sir ,  Diorchis. CHERC- N. 
52. ,  Aploporaksis CLERC. \. 

7. Fam. Taeniidae PERR. 
53. Gatt. Taenia Linn£. 8, V. 


Übergangsgruppe: 54. Gatt. Diploposthe Jacopı.!) V. 


S. Fam. Acoleinidae FUHRMANN. 

55. Gatt. Acoleus FUHRMANN. V\. 

56. ,„,  Gyrocoelia FUHRMANN. V. 

57. ,,  Diplophallus FUHRMANN. VW. 

58. ,, Shipleya FUHRMANN. V. 

58. ,,  Dioicocestus FUHRMANN. VX. 
9, Fam. Amabiliidae FUHRMANN. 

59. Gatt. Amabilia Dıam. V. 

60. ,,  Schistotaenia CoHN. X. 

61. ,„  Tairia KOWALEVSKY. V. 
10. Fam. Fimbriariidae WOLFFHÜGEL. 

62. Gatt. Fimbriaria FROELICH. V. 


1) Genus, das gewisse Ähnlichkeit mit den Aroleinidae zeigt, aber 
eine Vagina besitzt. 


30 O0. FuUHRMAnNN, 


Genera, die mangelhaft bekannt: 

63. Gatt. Tetracisdicotyle FUHRMANN. VW. 
64. Gatt. Copesoma SINITZIN. VW. 

Ein Vergleich der beiden systematischen Zusammenstellungen 
zeigt zunächst, daß seit dem Erscheinen der Arbeit von Max Braun 
1594—1900 eine bedeutende Vermehrung der Genera stattgefunden, 
indem wir nach den obigen Autoren 32 Cycelophylliden-Genera von 
Taenien vorfinden, von welchen nach Braun 21 in Vögeln vor- 
kommen. Dagegen zählen wir heute 64 Genera von Öyclophylliden, 
von welchen 54, also mehr als die doppelte früher bekannte Zahl, 
Vögel bewohnen. 

Es hat sich dabei namentlich auf Grund unserer Untersuchungen 
ergeben, daß eine Reihe von Gattungen, welche von Braun noch 
als typische Säugetiercestoden-Genera angesehen wurden, auch in 
Vögeln ihre Vertreter haben. 

Es sind dies, wie aus dem Vergleich der beiden Generalisten 
ersichtlich, Mesocestoides, Tetrabothrius, Bertia, Cittotaenia, Momiezia, 
Dipylidium, Hymenolepis, Davainea, Taenia. Von diesen waren zur 
Zeit des Erscheinens von Braun’s Arbeit nur die Genera Tetra- 
bothrius, Hymenolepis und Davainea als beide Vertebraten-Gruppen 
bewohnend bekannt. 

Die verschiedenen Klassen der Vertebraten zeigen folgende 
Vertretung in der Ordnung der Cycophyllidea: 

Amphibien 1 Genus, Reptilien 2 Genera, Vögel 53 Genera, 
Säugetiere 19 Genera. 

Es zeigen also die Vögel bei weitem die reichste Vertretung in 
dieser Cestoden-Ordnung und das nicht nur, was die Zahl der Genera, 
sondern auch was die Zahl der Arten betrifft, welche mehr als 
3mal so groß ist wie die der Säugetiertaenien. 

Braun unterscheidet bei den Cyclophylliden eine einzige Familie 
und 6 Subfamilien; ich glaube, daß bei der großen Zahl der Genera, 
welche immer noch zunimmt, den Subfamilien der Wert von Familien 
gegeben werden muß, welche dann, und dies z. T. bereits jetzt, in 
Subfamilien aufgeteilt werden können. 

Ich behalte die meisten Subfamiliennamen der Braun’schen 
Systematik als Familien bei. Die Subfamilie der (opesominae RAILL. 
mit den Genera Copesoma und Trichocephaloides ist zu streichen, indem 
sie auf die fehlerhafte und mangelhafte Beschreibung zweier längst 
bekannter, aber unkenntlich beschriebener Taenien aus Tringa be- 
gründet ist. Trichocephaloides gehört in die Nähe von Dilepas. 


Die Cestoden der Vögel. 31 


Die bei Braun am Anfang zwischen Mesocestordes und Tetra- 
bothrius stehenden Subfamilien der Acoleinae und Amabiliinae gehören 
an das Ende des Systems und müssen auch etwas anders angeordnet 
werde Es sind dies sehr spezialisierte Gruppen. Die Subfamilie 
der Dipylidiinae Rasur. wurde enger gefaßt und für die von BRAUN 
in dieselbe gestellten Genera der Familienname Dslepinidae aufge- 
stell. Die Cotugnia-Arten, die Braun hierher stellte, sind, wie 
unsere Untersuchung ergeben, typische doppelporige Davainea. Die 
Gattungen Ophryocotyle und Jdiogenes sind als Vertreter zweier be- 
sonderer Subfamilien der Davaineiden zu betrachten, mit welchen 
sie die ähnliche Bewaffnung des Scolex gemeinsam haben. Die 
Gattung Hymenolepis habe ich mit einigen andern neuern Genera 
in einer besondern Familie untergebracht. 

Echinoeotyle ist, wie ÜLErC gezeigt, nicht eine Davaineide, 
sondern eine typische Aymenolepis und bildet eine Untergattung 
dieses Genus, wenn man dieselbe nicht ganz fallen lassen will. 

In den 3 größten Familien, den Anoplocephaliden, Davai- 
neiden und Dilepiniden, zeigt sich allen gemeinsam dieselbe Tendenz 
in den Modifikationen des Uterus, welche mich veranlaßten, jede 
dieser 3 Familien in je 3 Subfamilien aufzuteilen. 

In der ersten Subfamiliengruppe ist der Uterus schlauch- oder 
sackförmig, mehr oder weniger verzweigt (Subfamilie der Anoploce- 
phalinae, Ophryocotylinae und Dilepininae). In der zweiten Gruppe löst 
sich der Uterus in zahlreiche Parenchymkapseln auf, in welchen 
die Eier einzeln oder zu mehreren liegen (Subfamilie der Linsto- 
winae, Davaineinae und Dipylidiinae). In der dritten Gruppe bildet sich 
an dem einfachen oder mehrfachen Uterus ein eigentümliches, an- 
fangs dichtes Parenchymorgan, das „Paruterinorgan“, in welches die 
Eier meist sehr spät eindringen, um dann von einer dichten Kapsel 
umgeben zu werden (Subfamilie der Z’hysanosominae, Idiogeninae und 
Paruterinae). 

Diese dritte Gruppe könnte man eigentlich in zwei teilen, je nach- 
dem das Paruterinorgan sich an den primären Uterus anliegend 
bildet oder als mehrfaches Gebilde sich an die sekundär in mehrere 
Uteri aufgeteilten Eibehälter anlegt. So würde dann die Subfamilie 
der Paruterinae in 2 Subfamilien geteilt werden müssen, während 
die Thysanosominae in die zweite, die Jdiogeninae in die erste der 
angedeuteten Gruppen zu stellen wäre. 

Ich glaube, daß unsere Art der Anordnung der Genera, wenn 


32 OÖ. FuHRMANN, 
auch nicht in allen Punkten eine natürliche, doch einen Fortschritt 
in der Systematik der Cyclophyllidae bedeutet. 

In den nachfolgenden Zeilen sind alle bis jetzt bekannten 
Vogelcestoden-Arten mit ihrer Synonymie zusammengestellt. Seit 
einer Reihe von Jahren hat man, wie schon in der Einleitung be- 
merkt, begonnen, die Taenien in bestimmten Genera unterzubringen, 
was leider von einzelnen Autoren, wie aus der Synonymie ersicht- 
lich, mit großer Willkür geschah. 

Es wurden namentlich durch die Arbeiten von CoHn und ÜLERC 
eine größere Zahl von Taenien aus dem alten alles umfassenden 
Genus Taenia in bestimmten neuen Genera untergebracht, doch blieb die 
systematische Stellung der großen Mehrzahl der Arten noch unbe- 
kannt. Dank dem Entgegenkommen der Museumsdirektoren und 
zahlreicher Helminthologen und Zoologen, welche mir sowohl ihre 
Originale als sonstige bedeutende Materialien übersandten, konnten 
die meisten Cestoden in bestimmte Genera eingereiht werden. Bei 
dieser systematischen Sichtung ergab sich leider auch die Notwendig- 
keit, einige in der Literatur häufig vorkommende Artnamen durch 
ältere zu ersetzen. Ebenso ist aus der in Fußnoten angeführten 
Synonymie ersichtlich, daß zahlreiche neuere Arten auf Grund unserer 
Untersuchungen gestrichen werden mußten, weil sie bereits früher, 
allerdings oft unvollständig, beschrieben worden waren. Eine Reihe 
alter unbeschriebener, aber trotzdem in der Literatur noch vor- 
kommenden Artnamen habe ich ganz zu streichen vorgeschlagen. 

In den Artlisten der einzelnen Genera ist immer hinter jeder 
Species die wichtigste zur Bestimmung notwendige Literatur ange- 
geben, soweit eine solche außer der Originalbeschreibung existiert. 


1. Fam. Tetrabothriidae. 


Scolex unbewaffnet, ohne Rostellum, von vier- 
eckiger Gestalt. Die vier Saugnäpfe sind groß, rund 
oder länglich-oval; sie tragen am Vorderende einen 
nach außen abgehenden muskulösen Anhang. welcher 
die meist viereckige Form des Scolex bedingt. Hals 
kurz,Strobilakurzgliedrig. DieGeschlechtsöffnungen 
einseitig ausmündend. Genitalcloake tief und mus- 
kulös; der Cirrusbeutel immer klein, durch einen 
männlichen Cloakenkanal mit der Genitalcloake ver- 
bunden. In Cetaceen und Vögeln. 


Die Cestoden der Vögel. 33 


Gatt. Tetrabothrius Ruvounrnı 1819. 


Synonymie: Amphoterocotyle Dies. 1863, Prosthecocotyle MONTICELLI 1892, 

Bothriotaenia LÖNNBERG 1896. 

Scolex unbewaffnet, von viereckiger Gestalt. Die 
vier Saugnäpfe sind groß, rund oder länglich-oval; 
sie tragen am Vorderrande einen nach außen abgehen- 
den muskulösen Anhang, welcher die viereckige Form 
des Scolex bedingt. Hals kurz; Strobila kurzgliedrig; 
dieGeschlechtsöffnungen sind immerrechts') gelegen. 
Die Genitaleloake tief und sehr muskulös. Der Cirrus- 
beutel klein, von kugliger Gestalt mit der Genital- 
cloake durch einen „männlichen Cloakenkanal“ ver- 
bunden. Dotterstock vor dem Ovarium gelegen. In 
Cetaceen und Vögeln. - 


Typische Art: Tetrabothrius macrocephalus Ru». 
syn. Bothriocephalus macrocephalus Run. 


Ruporpnr teilte das Genus Dothriocephalus in 4 Gruppen, deren 
letzte er Tetrabothrius benannte und der er 4 Arten zuteilte, von 
welchen 2 in die Genera Zchineibothrium und Anthobothrium gestellt 
wurden. So verbleiben im alten Subgenus Tetrabothrius nur noch 
T. macrocephalus und T. eylindraceus, von welchen die erstere Art 
nach Lüne's Vorschlag (Lüne 1899) als typische Art des Genus zu 
gelten hat. So fallen die später begründeten Genusnamen Ampho- 
terocotyle Dies. (für Amphoterocotyle elegans Dirs.), Prosthecocotyle Mox- 
TICELLI (für 7. forstert Krerrr), bothriotaenia LÖNNBERG (für 7. erostris 
LönnBer6) dahin. Die Mehrzahl der Arten sind von FUHRMANN 
(1899b) auf Grund der Untersuchung der Originale unter dem Genus- 
namen Prosthecocotyle kurz beschrieben worden. 


Charadriiformes. 
? Tetrabothrius macrocephalus Run. 1809, 


Lariformes. 


Tetrabothrius eylindraceus Rup. 1809 ?), FUHRMANN 1899b 
Tetrabothrius erostris (LÖNNBERG) 1889, FUHRMANN 1899b. 


1) In meiner Arbeit (1899b) steht irrtümlicherweise, daß die Genital- 
pori links liegen. 

2) Diese Taenie ist nach unserer Untersuchung der Typen synonym 
Taenia sternae Run. 


Zool. Jahrb., Supplement X. 3 


34 O0. FUHRMANN, 


Podieipediformes. 


Tetrabothrius macrocephalus!) Rup. 1809, FUHRMANN 1899b. 


Procellariformes. 


Tetrabothrius heteroclitus DIESING 1850 ?), FUHRMANN 1899b, 1899e 
Tetrabothrius torulosus v. LINSTOW 1888, FUHRMANN 1899b, 1899e 
Tetrabothrius monticelli?) FUHRMANN 1899b 

Tetrabothrius eampanulatus FUHRMANN 1899b 

Tetrabothrius intermedius FUHRMANN 1899b 

Tetrabothrius diomedeae FUHRMANN (in: SHIPLEY 1900b) 
Tetrabothrius wmbrella FUHRMANN 1899b. 


Aptenodytiformes. 


Tetrabothrius eudyptidis (LÖNNBERG, FUHRMANN *)), LÖNNBERG 1896, 
FUHRMANN 1899b 
Tetrabothrius lutzii PARONA 1901. 


Steganopodes. 


Tetrabothrius pelecani Rup. 1819°), FUHRMANnN 1899b. 


1) Linstow hat aus Colymbus septentrionalis L. eine zweite Art. 
unter dem Namen Teirabothrius lobatum v. Linstow 1905b beschrieben, 
welche aber, wie unsere Untersuchung des Originalmaterials gezeigt, iden- 
tisch ist mit der obigen RuDOLPHT'schen Art. 

2) Tetrabothrius heteroclitus ist synonym zu Amphoterocotyle elegans 
DIES., und ebenso ist, wie unsere Untersuchung des Originalmaterials ge- 
zeigt, Tetrabothrius auriculatus v. LINstow 1888 identisch mit obiger Art. 
Ein Vergleich der Originale hat gezeigt, daß auch T. suleiceps BAIRD 
1859 dieser Taenie synonym; ebenso ist nach Untersuchung der Originale 
obige Taenie synonym Taenia diomedea v. Linstow 1888. Weiteres 
Synonym: Hymenolepis suleiceps BAıRD, PARONA 1899. 

3) Bothriotaenia erostris var. minor LÖNNBERG 1896 ist synonym 
Tetrabothrius montieelli FUHRMANN, wie meine Untersuchung des Original- 
materials gezeigt hat. 

4) Unsere Untersuchung des Originalmaterials hat gezeigt, daß Bothrio- 
taenia erosiris var. eudyptidis LÖNNBERG 1896 eine gute Art ist, sie wurde 
von uns als T. eudyptidis beschrieben. 

5) Barkp hat Exemplare obiger Art als Tuenia heterosoma BAIRD 
nomen nudum und auch als Tuenia sulae fuscae BATRD nomen nudum be- 
zeichnet. Die Originalexemplare dieser beiden nicht beschriebenen Arten 
konnte ich im Britischen Museum in London untersuchen. MONTICELLI 
(1891), der die Originale ebenfalls gesehen, hält die beiden BAIRD’schen 
Arten wie ich für identisch mit 7. pelecanı RuD. 


Die Cestoden der Vögel. 35 


Ciconiiformes. 


Tetrabothrius porrigens Mouın 1858 u. 1861.) 


Aceipitres. 
Tetrabothrius junceus (BAIRD ?)) 1862, FUHRMANN 1899b. 


Anseriformes. 


Tetrabothrius aretieus v. LINSTOW 1901b. 


2. Fam. Mesocestoididae (SToss.). 


Scolextaenienartig, unbewaffnet undohneRostel- 
lum; Gliedermitflächenständigen Genitalpori; Vagina 
vor. oder neben dem Cirrus mündend. In Säugetieren 
und Vögeln. 


Genus Mesocestoides VAILLANT 1863. 


ScolexohneRostellum. Genitalpori flächenständig. 
Die Eier vereinigen sich in einer starkwandigen 
Uteruskapsel. In Säugetieren und Vögeln. 


Typische Art: Mesocestoides ambiguus VAILLANT 1863 (spec. inq.). 


Aceipitres. 


Mesocestordes perlatus (GOEZE) 1782 ?), MÜHLınG 1898. 


Passeriformes. 


Mesocestoides alaudae STOSSICH 1896. 


1) Diese Art ist leider nur sehr unvollständig beschrieben, die Originale 
waren trotz aller Bemühungen nicht erhältlich. 

2) Eine erneute Untersuchung des ÖOriginalmaterials macht es mir 
wahrscheinlich, daß T. junceus identisch mit 7. macrocephalus Rup. und 
durch das Verzehren eines Colymbus in den Darm von Gypagus papa 
gelangt ist. 

3) Synonymie: Halysis perlata ZEDER 1803; Taenia tenwis OREPLIN 
1829 scheint identisch mit M. perlatus GOEZE zu sein, ebenso Thenia 
chrysaeti VIBORG, wie DiIEsInG 1850 bereits andeutet. Synonym ist 
ebenfalls 7. margaritifera CREPLIN 1829. 

3* 


36 O. FuHRMAnN, 


3. Fam. Anoplocephalidae (R. Bu.). 


Kopf meist kuglig; seltner gestreckt, unbewaffnet; 
Saugnäpfe verhältnismäßig groß; Halsfehlt; Glieder 
kurz und breit; Parenchymmuskulatur sehr stark ent- 
wickelt. Genitalien einfach oder doppelt; Genital- 
pori randständig. Eier oft mit einem birnförmigen 
Apparat. In Säugetieren und Vögeln. 


1. Subfam. Anoplocephalinae R. BLANCH. 


Anoplocephaliden mit sackförmigem, gelapptem 
oder mehroder wenigerstark verzweigtem, selten netz- 
förmigem Uterus. In Säugetieren und Vögeln. 


Gatt. Bertia R. BLancHarn 1891. 


Strobilakurzgliedrig. Genitalporenalternierend, 
regelmäßig oder unregelmäßig. Die Geschlechtsgänge 
sehen dorsal an den beiden Excretionsgefäßen und 
dem Markstrang vorbei. Die Hoden liegen der Haupt- 
masse nach dem Vorderrand und der Dorsalfläche der 
Glieder genähert und bilden ein ununterbrochenes 
Feld zwischen den beiden Längsgefäben. Keimstock 
und Dottersack verschieben sich von der Medianlinie 
mehr oder weniger nach der Penisseite Der Uterus 
ist ein transversales Rohr, welches blinde, taschen- 
förmige Anhänge nach vorn und hinten treibt. Eier 
mit oder ohne birnförmigem Apparat. In Säugetieren 
und Vögeln. 


Typische Art: Bertia studeri R. BLAncH. 


Columbiformes. 


Bertia delafondi (RAILLIET) 18921), Stıuzs 1896, FUHRMANN 190la, 
1902b, WOLFFHÜGEL 1904. 


Coraeiiformes. 


Bertia pingwis FUHRMANN 1904c. 

1) v. Lisstow 1892a und MeGnın 1891 haben diese Taenie 
fälschlich unter dem Namen T. sphenocephala Rup. beschrieben. Meine 
Untersuchung der Originale hat aber gezeigt, daß letztere eine typische 
Hymenolepis-Art ist. 


Die Cestoden der Vögel. 37 


Gatt. Cittotaenia RıEHm 1881. 


Synonym: Coelodela SHIPLEY. 


Strobilakurzgliedrig. Genitalpori und Geschlechts- 
drüsen doppelt. Uterus einfach, ein querer röhren- 
förmiger Schlauch mit nach vorn und hinten gerich- 
teten Divertikeln. Die Geschlechtsgänge kreuzen die 
Exeretionsgefäße und Nerven dorsal. Birnförmiger 
Apparat meist vorhanden. In Säugetieren und Vögeln. 

Typische Art: Cittotaenia latissima RıEHn. 


Stıptey (1900) hat für 7. kuwaria Smipuey das neue Genus 
Coelodela begründet, welches aber, wie meine Untersuchung des 
Originalmaterials' gezeigt, in allen seinen Charakteren identisch ist 
mit Cittotaenia Rırsm und deshalb als Synonym dieses Genus auf- 
zufassen ist, s. FuHrmAann (19025). 


Rheiformes. 


Cittotaenia rhede FUHRMANN 1904c. 


Columbiformes. 
Oittotaenia kuvaria (SHIPLEY) 1900b, FUHRMANN 190la, 1902b, 1905a. 


Anseriformes. 


Oittotaenia avicola FUHRMANN 1897, 


Psittaciformes. 


Oittotaenia psittacea FUHRMANN 1904c. 


Gatt. Moniezia”R. BrancHarn 1891. 
Synonym: Paronia DIAMARE 1900a. 


Strobila meist kurzgliedrig. Genitalporen, Ge- 
schlechtsdrüsen und Uterus doppelt. Die Geschlechts- 
sänge kreuzen dorsal die Längskanäle und Mark- 
stränge. Eier meistmitgutentwickeltem birnförmigem 
Apparat. In Säugetieren und Vögeln. 


38 0. FuUHRMAnN, 


Typische Art: Moniezia expansa (Run.). 


Wir kennen aus Vögeln 5 verschiedene Arten dieses für Wieder- 
käuer so typischen Cestoden-Genus. Es zeigen die Vertreter, welche 
in drei verschiedenen Vogelgruppen hausen, eine etwas weniger 
spezialisierte Organisation als die Säugetier-Moniezien (FUHRMANN 
1902b). DiaMmArRE war der erste, der eine diesem Genus angehörende 
Art in Vögeln fand, er beschrieb dieselbe aber (1900d) unter dem 
neuen Genusnamen ‚Paronia, der also, wie unsere Untersuchung des 
Originalmaterials ergeben, als Synonym zu Moniezia Bu. einzu- 
ziehen ist. 


Columbiformis. 


Moniezia colımba FUHRMANN 1902h.!) 


Psittaciformes. 


Moniexia carrinot (DIAMARE) 1900a°), FUHRMANN (P. carrinoi) 190la, 
1902b 

Moniexia ambigua FUHRMANN 1902b 

Moniezia beauforti v. JANICKI 1906. 


Coraeeiformes. 


Moniezsa varvabılis FUHRMANN 1904e. 


Gatt. Aporina FuHrMmAann 1902a. 


Anoplocephaliden mit einfachem Geschlechts- 
apparat. Die weiblichen Geschlechtsorgane sind dem 
Proglottidenrande, nach welchem unregelmäßig ab- 
wechselnd die Vagina zieht, genähert. Die dorsal- 
selegenen Hoden sind sehr zahlreich hauptsächlich 
seitlich in der ganzen Länge der Proglottis gelegen; 


1) Synonym: Paronia carrinoi DIAMARE ex parte. 

2) Diese Taenie wurde von DIAMARE unter dem Namen Paronia 
carrinoi beschrieben; die Untersuchung des Originalmaterials der äußerst 
mangelhaft beschriebenen T' trichoglossi v. LINSTOW 1888 hat ergeben, daß sie 
identisch ist mit Paronia carrinoi DIAMARE. Ob nun aber der Name 
M. trichoglossi v. LINSTOW als Artname aufzufassen, wie M. BRAUN in 
einer Fußnote meiner Arbeit anführt, scheint zweifelhaft, nachdem v. LINSTOW 
1902 selbst sagt, daß der Name T. trichoglossi nicht als Artname auf- 
zufassen ist, sondern daß derselbe im Sinne RupoLpHr’s bedeutet: unsichere 
Form aus Trichoglossus. 


Die Cestoden der Vögel. 39 


sie finden sich ebenfalls zahlreich außerhalb der 
Längsgefäßbe des Excretionssystems, dagegen sind sie 
median sehr spärlich. Die Geschlechtsgänge gehen 
über die Excretionsstämme und vereinigen sich, ohne 
auszumünden (. Der ÜUterusistmedian, wo der Üterin- 
gang einmündet, sehr eng, so daß zwei Uteri vorge- 
täuscht werden; er bildet beiderseits hinten ein cha- 
rakteristisches Cöcum, das über das Wassergefäß- 
system weggeht und außerhalb undparalleldemselben 
nach vorn verläuft. Eier zwei Schalen. In Vögeln. 


Typische Art: Aporina alba FuUHRrMAnN 1902a. 


WOoLFrHÜücen (1904) und Janıckı 1904 haben, ersterer bei einer 
Vogel-Dertia, letzterer bei zwei Säugetier-Aymenolepis-Arten eben- 
falls die Tatsache des Fehlens eines Genitalporus konstatiert. 
WOLFFHÜGEL bezeichnet diese Erscheinung bei Dertia delafondi als 
eine individuelle Abweichung, welche das Bestreben der Einführung 
der Selbstbefruchtung andeutet. Janıckı faßt diese Erscheinung 
ebenfals als eine individuelle Variation auf, der kein systematischer 
Wert zukommt, und er spricht deshalb dem Genus Aporina die Be- 
rechtieung ab. Nun ist aber Aporina alba nicht nur durch den 
Mangel eines Genitalporus charakterisiert, sondern zeigt noch andere 
anatomische Eigentümlichkeiten (s. 1902b), welche es nicht erlauben, 
wie JANnIcKI anzunehmen scheint, obige Form dem Genus Bertia ein- 
zuverleiben: es sind dies vor allem die Disposition der Hoden und 
der Bau des Uterus. Sollte also bei andern Exemplaren von A. alba 
Genitalpori nachgewiesen werden, so bleibt trotzdem das Genus be- 
stehen, ist dann allerdings nach einem Charakter benannt, den es 
nur ausnahmsweise besitzt, was aber nach den Nomenklaturregeln 
nicht erlaubt, dem Genus einen andern Namen zu geben. Übrigens 
ist dies eine Erscheinung, die bei alten Genera sehr oft anzu- 
treffen ist. 


Psittaciformes. 
Aporina alba FUHRMANN 1902a, 1902b. 


2. Subfam. Linstowinae FUHRMANN. 


Anoplocephaliden, deren Uterus wie bei Davainea 
in zahlreiche Kapseln zerfällt. In Säugetieren und 
Vögeln. 


40 O. FuHrumansn, 


Gatt. Zschokkea FUHRMANN. 


Strobila kurzgliedrig. Geschlechtsöffnungen ein- 
seitig. Äußeres Parenchym und Parenchymmuskulatur 
sehrstarkentwickelt. Diedorsalen Excretionsstämme 
außerhalb der Ventralen gelegen und unter sich ver- 
bunden durch ein peripheres Netz von feinen Gefäßen. 
Die Geschlechtsgänge gehen unter den Wassergefäßen 
undüberdemLängsnerven durch. Cirrusbeutelschwach; 
Hoden dorsal in der ganzen Proglottis verteilt. Die 
weiblichen Geschlechtsdrüsen sind auf der Porus- 
seite zwischen dorsalem und ventralem Wassergefäbß 
selegen. Uterus löst sichin Eikapseln’auf In Vöceln 


Typische Art: Zschokkea linstowi (PARONA). 


Galliformes. } 
Zschokkea linstowi (PARoNA) 1885), FUHRMANN 190la, 1902b. 


4. Fam. Davaineidae FUHRMANN. 


Scolex mit Rostellum, bewaffnet mit sehr zahl- 
reichen hammerförmigen Haken; Saugnapfränder 
meist mit kleinern Häkchen besetzt. Genitalorgane 
einfach oder doppelt,einseitig,beiderseitigoderalter- 
nierend ausmündend. Eier in einem sackförmigen 
Uterus oder inEikapseln im Parenchym zerstreut oder 
in einem Paruterinorgan vereinigt. In Säugetieren 
und Vögeln. 


1. Subfam. Ophryocotylinae FUHRMANN. 


Rostellum von sehr bedeutendem Durchmesser. 
Saugnäpfenuram Vorderrande bewaffnet. Uterussack- 
förmig. In Vögeln. 


Gatt. Ophryocotyle Frıs 1869. 


Kopf mit sehr breitem, einfach gebautem retrak- 
tilem Rostellum, das bei gewissen Kontraktions- 


1) Diese Art wurde von mir zunächst als zum Genus Linstowia gehörig 
beschrieben, während PARronA 1900a sie ins Genus Hymenolepis stellte. 


Die Cestoden der Vögel. 41 


zuständen mehrere Vertiefungen aufzuweisenscheint, 
es ist bewaffnet mit einer doppelten Reihe sehr zahl- 
reicher kleiner hammerförmiger Haken. Die 4 Saug- 
näpfe am Vorderrande mit einigen Querreihen von 
Häkchen bewaffnet. Genitalpori unregelmäßig alter- 
nierend. Uterus sackförmigleicht gelappt. In Vögeln. 


Typische Art: Ophryocotyle proteus Frıs 1869. 


Aus der Beschreibung der Autoren scheint es, als ob kein 
Rostellum vorhanden, sondern nur eine vordere Verbreiterung des 
Scolex, welche mit 5 Vertiefungen versehen und von Häkchen be- 
wafinet ist. Die Untersuchung des Originalmaterials von O. insignis 
LÖNNBERG hat aber obige Diagnose ergeben und gezeigt, dab 
Ophryocotyle ein den Davaineiden angehöriges Cestoden-Genus ist, 
dessen Uterus sich nicht in Parenchymkapseln auflöst. 


Charadriiformes. 


Ophryocoiyle proteus Frıs 18691), VırLor 1875 (Oph. lacazıı VILLOT), 
BLANCHARD 1891a 
Ophryocotyle insignis LÖNNBERG 1890, BLANCHARD 189la. 
Lariformes. 
Ophryocotyle proteus Frııs 1869.) 


Passeriformes. 


Ophryocotyle zeylanica v. Linstow 1906a. °?) 


Die 4Saugnäpfe desScolexamRande mitmehreren 
Ringen feiner Häkchen besetzt. Der Uterus löst sich 
in zahlreiche im Parenchym gelegene Eikapseln auf. 


2. Subfam. Davaineinae Braun. 


1) Oph. lacazii VILLOT ist nach BLANCHARD 1891a sicher identisch 
mit Oph. proteus FRLS. 

2) Das Vorkommen dieser Art in ZLarus canus scheint mir fraglich, 
und Frıs, der allein diesen Wirt konstatiert, hatte vielleicht eine andere 
Art vor sich. 

3) Diese Art zeigt, wie unsere Untersuchung des Öriginalmaterials 
ergeben, keine doppelten Genitalporen, wie v. Linstow angibt, sondern 
die Geschlechtsöffnungen liegen unregelmäßig abwechselnd. 


42 O0. FuHRMAnNN, 


Gatt. Davainea R. BrancHArD 1891. 
Synonymie: Bothriotaenıa RAILLIET 1892b. 


ScolexbewaffnetmiteinemRostellum ohne Muskel- 
tasche. Dasselbe trägt zwei Kränze sehr zahlreicher 
kleiner HakenvonHammerform. Saugnäpfebewaffnet 
mit mehreren Reihen feiner Häkchen. Genitalporen 
einseitig oder unregelmäßig alternierend. Uterus 
sichin Eikapseln auflösend, die ein oder mehrere Eier 
enthalten. In Säugetieren und Vögeln. 


Typische Art: Davainea proglottina (Dav.). 


Dem Genus Davainea ist synonym Bothriotaenia RAILLET 1892b, 
indem, wie Lünr 1899 (p. 40) nachzuweisen sucht, der Typus dieses 
Genus Bothriotaenia longicollis MoLın keine Bothriocephalide, sondern 
höchstwahrscheinlich eine Davainea ist. Ferner wurde von MontI- 
cELLı 1893 für die T. tauricollis das Genus Chapmania aufgestellt, 
und da diese Art für eine Davainea-Art gehalten, wurde Chapmania 
als Synonym zu Davainea aufgefaßt, was aber nicht zutreffend ist. 

Von dem artenreichen Genus Davainea wurden zuerst unter 
Subgenusnamen Capsodavainea FUHRMAnNn 190le und unter dem 
Namen Chapmania (MoNTIcELLı 1893) FuHrMAnN 1906a eine Vogel- 
Davainea-Art, Davainea tauricollis CuarMm. FUHRMANN 189%, abgetrennt 
(siehe Genus Chapmania). 

Conn (1901) hat vorgeschlagen, das Genus Davainea aufzuteilen, 
doch scheint mir dies bei der großen Homogeneität der Gattung ein 
schwieriges und unnützes Beginnen zu sein. Ich fasse das Genus 
Davainea trotz der sekundären Auflösung des Uterus in Kapseln 
wegen des Baues des Rostellums und seiner Bewaffnung mit sehr 
zahlreichen und sehr kleinen Haken als vielleicht das älteste 
Cestoden-Genus, mit einem Rostellum und Haken bewaffneten Scolex 
auf. Diese Annahme findet ihre Stütze in der Verbreitung dieser Tae- 
nien, indem die ältesten Vogelgruppen Struthioniformes, Casuariformes, 
Crypturiformes und Galliformes ausschließlich oder fast ausschlieb- 
lich von Davainea-Arten bewohnt werden. Zahlreiche Davainea-Arten 
haben noch die Columbiformes und Psittaciformes. 


Die Cestoden der Vögel. 43 


Struthioniformes. 


‚Davainea struthionis (HOUTTUYN) 1773, PARONA 1885, Linstow 1893a. 


Rheiformes. 
Davainea struthionis (HOUTTUYN) 1773. 


Casuariformes. 


Davarnea australis (KRABBE) 1869, BLANCHABD 189la. 


Crypturiformes. 


Davainea oligacantha FUHRMANN 1908c 
Davainea elongata FUHRMANN 1908ec 
Davainea capillaris FUHRMANN 1908e 
Davainea erypturi FUHRMANN 1908e. 


Galliformes. 


Davainea wurogalli (MODEER) 1790); KrRABBE 1869, 1832, BLANCHARD 
1891a 

Davainea cestieillus (MoLın) 18581); KraBBE 1869, BLANCHARD 189la, 
STILES 1896; Ransom 1905 

Davainea tetragona (MouLin) 1858, KrasBpE 1882, DiamAarE 1893, 
BLANCHARD 189la, StiLes 1896, Ransom 1904, Ransom 1905 

Davainea ? longicollis (Mouın) 1858 ?) 

Davainea cantaniana (POLONIO) 1860 ?), BLANCHARD 1891la, STILEs 1896, 
RAILLIET 1899b 

_Davainea proglottina (DAvAınE) 1860; BLANCHARD 1891la; StıLzs 1896 

Davainea proglottina var. dublanensis KowAL. 1895 

Davainea eircumvallata (KRABBE) 1869 t), CRETY 1890a (Dav. pluriuneinata 
CRETY), BLANCHARD 1891la; MoLA 1907. 


1) Nach unserer Untersuchung des Originalmaterials ist Davainea clava 
(BAırp) 1853 synonym zu Dav. urogalli (MODEER). 

Dieser Cestode wurde von DUJARDIN 1845 als T. infundibuliformis 
GOEZE beschrieben. 

2) Wie schon oben bemerkt, beschrieb Mouın 1858 diesen Cestoden 
unter dem Namen Dothriocephalus und schuf RAILLIET 1892b das Genus 
Bothriotaenia mit obigem Typus. Nach StıLes 1896, LünE 1899 ist der 
betreffende Cestode wohl sicher eine Davainea, und es scheint mir wahr- 
scheinlich, daß sie synonym ist mit einer der zahlreichen Hühnerdavaineen, 
sehr wahrscheinlich mit Davainea tetragona (MOLIN). 

3) Dieser typische Cestode ist von MAGALHAES 1898 unter dem 
Namen Dav. oligophora Mac. 1898 beschrieben worden und ist, wie 
RAILLIET 1899b nachweist, synonym mit Dav. cantaniana POLONIO. 

4) BLANCHARD 1891la weist nach, daß Dav. pluriuncinata CRETY 
1890 synonym ist zu Dav. cireumvallata KRABBE. 


44 OÖ. FuUHRMARN, 


Davainea friedbergi v. LInNSTOw 1878), BLANCHARD 1891a; STILES 1896 

Davainea echinobothrida MEGNIN 1881 ?); Pıana 1882 (T. bothrioplitis) ; 
BLANCHARD 189la; Stines 1896; Ransom 1904; Ransom 1905 

Davainea globocaudata CoHn 1901 

Davainea mutabilis RÜTHER 1901?) 

Davainea parechinobothrida MAGALH. 1898 *) 

Davainea retusa CLERC 1903 

Davainea volzi FUHRMANN 1905a 

Dawvainea pintneri Kuaprocz 1906 

Davarnea globirostris FUHRMANN 1908c 

Davarnea leptacantha FUHRMANN 1908ec 

Davarinea polyuterina FUHRMANN 1908e 

Davainea campanulata FUHRMANN 1908c 

Davainea penelopina FUHRMANN 1908c. 


Ralliformes. 
Davainea brachyrhyncha (CREPLIN) 1853.) 


Charadriiformes. 
Davainea minuta CoHn 1901 


Columbiformes. 


Davarnea erassula (Run.) 18199), KraBBE 1869, 1882, Oterc 1906b, 

BLANCHARD 1891a (D. columbae ZEDER), STILES 1896 

1) Dieser von FRIEDBERGER 1877 beschriebene und von v. LINSTOwW 
1878 benannte Cestode wurde von MEGNIN unter dem Namen Thenia 
agama MEGNIN 1878 beschrieben, den er dann im selben Jahre vorschlug 
Taenia infundibuliformis var. phasianorum MEGNIN zu nennen (s. STILES 
1896). Nach BLAncHARD 1899a ist auch Dav. guevillensis MEGNIN 1898 
identisch mit Dav. friedbergi v. LINST. 

2) Nach Ransom (1904) ist Dav. bothrioplitis PıIANA 1882 identisch 
mit Dav. echinobothrida MEGNIN 1881 und nicht mit Dav. tetragona 
(Moin). 

3) Davainea mutabilis RÜTHER scheint mir ohne Zweifel keine neue 
Art, sondern mit einer der längstbekannten Hühnerdavaineen identisch zu 
sein. Die Beschreibung ist aber eine so mangelhafte, daß nicht mit 
Sicherheit zu sagen, ob dieser Cestode wirklich, wie ich vermute, mit Dan, 
cesticillus (MOLIN) identisch ist. 

4) Dav. parechinobothrida MAGALH. ist vielleicht, wie Ransom 1904 
angibt, identisch mit Dav. tetragona. 

5) Taenia brachyrhyncha CREPLIN ist, wie meine Untersuchung des 
Originalmaterials gezeigt, eine Davainea. 

6) Davainea erassula (RuD.) ist vielleicht synonym zu T. columbae ZEDER 
1800, da aber letzterer Cestode nur sehr mangelhaft beschrieben und das 
ÖOriginalmaterial nicht mehr vorhanden, ist es wohl richtiger, den Namen 
RupoLpHrT’s beizubehalten, da wir von demselben das Originalmaterial besitzen. 


Die Cestoden der Vögel. 45 


Davainea insignis (STEUDENER) 1877, BLANCHARD 1891a 
Davainea columbae FUHRMANN 1908c 

Davainea micracantha FUHRMANN 1908c 

Davainea eryptacantha FUHRMANN 1908c 

Davainea goura FUHRMANN 1908ec 

Davainea paueitesticulata FUHRMANN 1908e. 


Cieconiiformes. 


Davainea circumeincta (KRABBE) 1869, BLANCHARD 1891a. 


Anseriformes. 


Davainea anatina FUHRMANN 1908ec. 


Aceipitres. 


Davainea sphaerordes CLERC 1902b, 1903 
Davainea hertwigi MoLA 1907a. 


Psittaeiformes. 


Davainea (?) longissima GOEZE 1782 }) 

Davainea leptosoma (Dies.) 1850, KrABBE 1869, BLANncHARD 1891la, 
FUHRMANN 1896 

Davainea macroscolecina FUHRMANN 1908c 

Davainea mieroscolecina FUHRMANN 1908e. 


Coceygiformes. 


Davainea difformis (Run.) 1819 ?) 
Davarnea calcariıa FUHRMANN 1908c 
Davainea undulata FUHRMANN 1908e 
Davainea macrocirrosa FUHRMANN 1908e. 


1) Diese Taenie wurde von RUDOLPHI mit dem Namen T. filiformis 
Rup. 1809 belegt und nach GOEZE’s Angaben beschrieben, welcher diese 
Taenie Tauenia longıssima GOEZE 1782 nannte. Der allgemein angenommene 
Name T. filiformis Ru». sollte deshalb durch die GOEZE’sche Benennung 
ersetzt werden. Sehr wahrscheinlich handelt es sich um eine Davainea, 
und vielleicht ist 7. longissima synonym zu Dav. leptosoma Dies. Da die 
Typen nicht mehr existieren, ist diese Art wohl besser zu streichen, 

2) RUDOLPHI nannte diese Art T. difformis Run. 1819; sie ist, wie 
er selbst sagt, identisch mit Tuenia brewieollis FRÖLICH. In der RUDOLPHI- 
schen Sammlung finden sich in Glas No. 1906 die Typen dieses Cestoden, 
deren Untersuchung gezeigt, daß es ein Vertreter des Genus Davainea ist. 
Ich behalte den Namen, zu welchem die Typen existieren, bei. 


46 0. FUHRMARN, 


Coraciiformes. 


Davainea magnicoronata FUHRMANN 1908e. 


Piei. 
Davainea frontina Dus. 1845, KrAaBBE 1869, BLANCHARD 1891a 
Davainea erueiata (Run.) 1819 1) 
Davainea lutzi PARONA 1901 
Davainea longispina FUHRMANN 1908e. 


Passeriformes. 


Davainea spinosissima v. LINnsT. 1893b 
Davainea corvina FUHRMANN ?) 1905a 
Davainea compacta OLERC 19065 ?) 
Davannea paradısea FUHRMANN 1908c 
Davainea uniuterina FUHRMANN 1908c 
Davarnea globocephala FUHRMANN 1908e. 


1) Die Originalexemplare von Davainea cruciata (RuD.) sind noch 
sehr jung und nur 7 mm lang, die Untersuchung der Scoleces hat 
aber ergeben, daß deren Bewaffnung sehr ähnlich, aber nicht identisch ist 
mit denjenigen von Davainea frontına (Dus. 1845). Der von ÜLERC 
1903 als Davainea frontina beschriebene Oestode gehört wohl einer andern 
Art an, indem hier die Haken 0,014 mm lang sein sollen, während sie bei 
der wirklichen Dav. frontina nur 0,007—0,01 mm lang sind. Es nähert 
sich der Üestode CLERC’s in der Größe der Haken Davainea lutzi 
PAaronA 1901. — T. erenata GOEZE 1782 scheint mir nicht, wie DIESING 
1850 annimmt, identisch zu sein mit T. crateriformis, sondern mit T. eruciata 
Ru».; der Entscheid ist aber nicht sicher zu treffen, so daß ich keine 
Namensänderung eintreten lasse (siehe auch FUHRMANN 1908e). 

2) v. Linstow beschreibt unter dem Namen Davainea polycalcarıa 
v. Linstow 1906 einen Cestoden, welcher trotz der mangelhaften Be- 
schreibung sicher identisch ist mit Davainea corvina FUHRMANN 1905a. 

3) Aus Oriolus galbula kennen wir 2 Davaineen, welche sehr wahr- 
scheinlich identisch sind, d. h. der in der ÖREPLIN’schen Sammlung sich 
findende und von KRABBE als Dav. frontina bezeichnete Cestode ist wohl 
nichts anderes als Dav. compacta CLERC, so daß also Dav. frontina nur in 
Coraciiformes und nicht auch in Passeriformes parasitiert. Exemplare 
einer Davainea aus Oriolus galbula, welche ich in meiner Sammlung mit 
dem Namen D. frontina bezeichnet besitze, sind in der Tat nicht identisch 
mit dieser Art, sondern stimmen mit Dav. compacta CLERC überein. 


Die Cestoden der Vögel. 47 


Gatt. Polycoelia FUHRMANN. 


Cestoden mit einfach gebautem, von drei Haken- 
reihen bewaffnetem Rostellum; Glieder viel breiter 
alslang. Rindenparenchym und Muskulatur sehr stark 
entwickelt. Das dorsale Paar der Excretionslängs- 
stämme fehlt. Die Genitalporen sind einseitg. Die 
Geschlechtsgänge gehen über dem ventralen Excre- 
tionsstamm durch. Die weiblichen Genitaldrüsen sind 
stark poralwärts verschoben und transversal an- 
geordnet, so daß vom Rand nach innen zunächst 
Ovarium, dann Schalendrüse und darauf Dotterstock 
folgen. Die Eier sind in Parenchymkapseln gelegen. 


Typische Art: Polycoelia lata FUHRMANN 1901a. 


Diese Art wurde zuerst als Linstowia lata beschrieben trotz 
einiger Unterschiede in den Charakteren. Aber wie ZcHoKkE (1904) 
betont, stört diese Form die Einheitlichkeit des Genus Linstowia be- 
deutend, so dab ich mich veranlaßt sehe, ein neues Genus zu be- 
gründen, und dies namentlich auch, weil Krarrocz bei dieser Art 
ein Rostellum mit kräftiger Muskulatur zefunden, und auch, weil ich 
mich veranlaßt sehe, den Cestoden anders zu orientieren. 

Was nun zunächst das Rostellum anbetrifft, das Krarrocz (1906) 
auf Schnitten deutlich konstatiert, so habe ich es ebenfalls vor kurzem 
an neuem Material gesehen, aber nicht hakenlos, sondern mit 3 Reihen 
von Davainea-Haken bewaffnet. 

Bei erneuter Betrachtung der Schnitte und der fig. 20 (FunHr- 
MANN 1902b) scheint es mir richtiger, das, was ich als ventrale 
Seite des Wurmes angesehen, als dorsale zu bezeichnen. Die Ent- 
scheidung ist etwas schwierig, da nur das ventrale weite Längs- 
gefäß des Excretionssystems vorhanden und das dorsale, wie auch 
Krarrocz nachgewiesen, vollkommen fehlt. Die Lage des Schluck- 
apparats des Keimstockes, der Schalendrüsen und des Dotterganges 
veranlassen mich zu dieser neuen Interpretation; allerdings würden 
dann die sonst ganz dorsalen Hoden etwas ventral verschoben sein. 
Die Geschlechtsgänge gehen also nicht, wie ich früher geschrieben, 
unter, sondern über Excretionsgefäß und Nervensystem durch. 


Galliformes. 
Polycoelia lata FUHRMANN 190la, 1902b, Krarrocz 1906. 


48 O. FUHRMANN, 


Gatt. Cotugnia DiAmArRE 1893b (FuHrMmann) 1901e. 


Rostellum und Form der Haken wie bei Davainea. 
Strobila kurzgliederig Parenchymmuskulatur aus 
mehreren Lagen von Längsbündeln bestehend, zwi- 
schen welchen Transversalfasern verlaufen. Ge- 
schechtsorgane doppelt. Die Geschlechtsgänge gehen 
beiderseitsüber die Excretionsstämme undden Haupt- 
längsnerven. Die Hoden liegen median, sindaberauch 
lateral, dorsal von den weiblichen Geschlechtsdrüsen, 
bis überdie Excretionsstämmehinauszu finden. Jeder 
Cirrusbeutel kann seine abgegrenzte Hodengruppe 
haben. Die Eier werden wie bei Davaineain Parenchym- 
kapseln verteilt. In Vögeln. 


Typische Art: Ootugnia digonopora (Pasq.) 1890. 


Dieses Genus wurde von DIAMARE aufgestellt, aber nur unvoll- 
ständig charakterisiert, so dab Braun 1900 dasselbe in der Unter- 
familie der Dipylidiinae unterbrachte, während, wie die nähere Unter- 
suchung gezeigt (FuHrmann 1901c), die Cotugnia-Arten typische 
doppelporige Davainea sind und die Gattung also in die Unter- 
familie der Davaineinae zu stellen ist. 


Casuariiformes. 


Cotugnia collini FUHRMANN 1908ec. 


Galliformes, 


COotugnia digonopora (PASQUALE) 1890, STILES 1896 
Colugnia erassa FUHRMANN 1908. 1) 


CGolumbiformes. 


Ootugnia inaequalis FUHRMANN 1908c 
COotugnia polyacantha FUHRMANN 1908e. 


2. Subfam. Idiogeninae FUHRMANN. 


Davaineiden, welcheein Parauterinorgan besitzen, 
in welches die Eier vom Uterus oder von Parenchym- 
kapseln aus eindringen. 


1) Von v. Liınstow 1901 als T. linstowi PARONA bezeichnet. 


Die Cestoden der Vögel. 49 


Gatt. Idiogenes KrABBE 1868. 


Kleine Cestoden, deren Scolex in Form und Be- 
waffnung mit demjenigen der Davaineen identisch ist. 
Genitalporen unilateral. Cirrusbeutel sehr groß mit 
Retractor. Vor dem gelappten Uterus eine dichte 
Parenchymmasse, ein Parauterinorgan, in welches die 
Eier meist spät hineingedrängt werden. Es bildet 
sich eine starkwandige Kapsel. In Vögeln. 


Typische Art: Idiogenes otidis KrABBE 1868. 


Neuerdings hat man den schon lange gesuchten Scolex von 
J. otidis gefunden und hat es sich herausgestellt, daß derselbe 
identisch ist in Struktur und Bewaffnung mit demjenigen der 
Davainea-Arten, so dab also diese Gattung in die Familie der 
Davaineidae zu stellen ist. 

Der von ZscHokke beschriebene Pseudoscolex existiert wohl nicht. 
Ebenso ist die Anatomie namentlich des Uterus und das Parauterin- 
organ von dem betreffenden Autoren wie auch von Vorz (1900) nicht 
richtig dargestellt worden. Daß, wie KowArLevskı 1906 annimmt, 
J. otidis, I. grandiporus und I. flagellum nur Varietäten einer und 
derselben, für die Trappen so charakteristischen Cestoden-Species 
sind, halte ich nicht für zutreffend, auf jeden Fall ist diese An- 
nahme nicht für /. flagellum geltend, während wohl 7. grandiporus 
identisch ist mit /. flagellum, entgegen der Ansicht CHOLODKOVSKY’S 
1906. 

Gruiformes. 


Idiogenes horridus FUHRMANN 1908ec. 


Otidiformes. 
Idiogenes otidis KRABBE 1868!); ZscHOKKE 1888b 


Aceipitres. 


Idiogenes flagellum (GOEZE) 1782 ?), Vouz 1900 (T. mastigophora KRABBE), 
FUHRMANN 1906a. 


1) CHoLoDKOVSKY 1905, 1906 beschrieb eine neue Idiogenes-Art, 
I. grandiporus CHOLODKOVSKY, welche aber identisch mit /. otidis KRABBE 
ist (siehe auch KOWALEVSKT 1906). 

2) Synonymie: Halysis flagellum ZEDER 1803; mich stützend auf 


Zool. Jahrb., Supplement X. 4 


50 O0. FuHRMARN, 


Gatt. Chapmania MosticEutı 1895 (FUHRMANnN 1906a). 
Synonymie: Oapsodavaineu« FUHRMANN 190le. 


Cestoden, deren Scolex in Form und Bewaffnung 
demjenigen der Davaineen identisch ist. Die Eier ge- 
langen in einen stark verzweigten Uterus und von da 
wie bei Davainea in Parenchymkapseln, worauf siein 
abgelösten Gliedern in ein am Vorderrand gelegenes. 
breites, großes Paruterinorgan gepreßt werden, das 
eine Kapsel um sie bildet. Die Längsmuskulatur sehr 
mächtig, besteht aus mehreren Lagen von Längs- 
muskelbündeln. 


Typische Art: COhapmania tauricollis (Cuarm. 1876). 


Dieses von Monticeruı 1893 und später genauer von mir (1906a) 
charakterisierte Genus ist von Czerc 1906b aufgehoben und mit. 
Idiogenes vereinigt worden. Nun sind aber die typischen /diogenes- 
Arten kleine, dünne, schwach muskulöse Formen, während die 
Chapmania-Arten relativ große dicke Cestoden sind, welche eine 
überaus mächtige Längsmuskulatur besitzen, welche an die der 
Anoplocephaliden erinnert. Außerdem löst sich bei Chapmania der 
Uterus auf und gelangen die Eier ins Parenchym, bevor sie in das. 
Paruterinorgan gestoßen werden. 


Rheiformes. 


Chapmania tauricollis (CHAPMAN) 1876b!), FUHRMANN 1896 (Davainea: 
tauriecollis CHAP.). 


Otidiformes. 
Chapmania tapiea (CLERC) 1906b (Idiogenes tapika). 


die irreführende Beschreibung von VoLz, schuf ich eine Ohapmania longt- 
eirrosa FUHRMANN 1906a für eine Taenia aus Milvus, welche nach Studium. 
der Originalpräparate von Dr. VoLz sich als identisch mit 7. flagellum 
herausstellte, von welcher aber der typische Davaineen-Scolex bis jetzt nicht 
bekannt war und von mir gefunden wurde. 

1) Diese Art wurde von ZSCHOKKE 1888a sehr mangelhaft unter dem 
Namen T. argentina ZsCHOKKE beschrieben. Die Beschreibung wurde 
später von mir (1896) berichtigt und ein besonderes Subgenus und später 
Genus für diese Form geschaffen (s. oben). 


Die Cestoden der Vögel. 51 


5. Fam. Dilepinidae FuUHRMAnN. 


Cestoden mit, selten ohne bewaffnetes Rostellum. 
Saugnäpfe unbewaffnet. Genitalpori randständieg. 
Geschlechtsorgane in jeder Proglottis einfach oder 
doppelt. Uterussehrverschiedengestaltet. InSäuge- 
tieren und Vögeln. 


1. Subfam. Dilepinae FUHRMANnN. 


Dilepinidae mit sackförmigemodereelapptemein- 
fachem Uterus. In Säugetieren und Vögeln. 


(satt. Dilepis WEINLAND 1858. 
Rostellum mit zwei Hakenkränzen. Genitalpori 


einseitig. Hodenam Hinterendeder Proglottis. Uterus 
sackförmig. In Vögeln und Säugetieren. 


Typische Art: Dilepis undula (SCHRANK) 1788. 
Synonymie: T. angulata Ru». 1809 (siehe unten). 


Mit dem Genusnamen Dilepis wurden von CoHn 1899a zuerst 
die 10Ohakigen Hymenolepis-Arten bezeichnet, es stellte sich aber 
dann heraus, daß der Typus des Genus mehr als 10 Haken hat und 
nicht dreihodig ist. Es stellte dann Comn 1900b obige Diagnose 
für die Gattung auf. 


Gruiformes. 
Dilepis macrocephala FUHRMANN 1908b. 


Charadriiformes. 
Dilepis retirostris (KRABBE) 1869 
Dilepis nymphoides CLERC 1903 
Dilepis unilateralis FUHRMANN 1908b 
Dilepis recapta ÖLERC 1906b 
Dilepis limosa FUHRMANN 1907a. 


Steganopodes. 
Dilepis scolecina (RunD.) 1819; KRABBE 1869, 


Lariformes. 
Dilepis? ceylindrica CLERC 1902, 1903. 
4* 


52 O. FuHrManN, 


Cieoniiformes. 


Dilepis campylaneristrota (WEDL) 18561), KrABBE 1869 (T. wnlateralis), 
CLERC 1906b (Dilepis unilateralis) 

Dilepis urceus (WEDL) 1856, KRABBE 1869 

Dilepis transfuga (KRABBE) 1869 

Dilepis hoplites (v. Liınstow) 1903 

Dilepis bicoronata FUHRMANN 1908b 

Dilepis crassirostrata FUHRMANN 1908b 

Dilepis lobata FUHRMANN 1907a 

Dilepis papillifera FUHRMANN 1908b 

Dilepis? nasuta FUHRMANN 1908b. 


Aceipitres. 
Dilepis oligorchida FUHRMANN 1906a. 


Coraeiiformes. 
Dilepis caprimulgorum FUHRMANN 1908b. 


Passeriformes. 


Dilepis undula SCHRANK 1788 ?), KRABBE 1869 (T. undulata RuD.); VoLz 
1900 [Didlepis angulata (Run.) und Dilepis undulata (RuD.)]. 


1) Die Untersuchung des Originalmaterials von RUDOLPHI hat gezeigt, 
daß der Typus des von KRABBE und ÜLERC als Dilepis unlateralis RuD. 
1819 bezeichneten Cestoden eine Aymenolepis-Art ist (FUHRMANN 1906e) 
und daß deshalb die als Synonym zu obiger Art bezeichnete 7uenia cam- 
pylaneristrota WEDL 1856 als Artbezeichnung angenommen werden muß. 

2) Die Untersuchung des ÖOriginalmaterials hat ÜoHN gezeigt, daß T. 
undula SCHRANK 1788, T. undulata Run. 1809 und T. angulata Run. 1809 
(Vorz 1900) ein und dieselbe Art sind. CoHn 1901, welcher die Syno- 
nymie dieser letzteın genau bespricht, tat dies leider in wenig klarer 
Weise. Außer obigen Synonymen sind aber nach DiıeEsıng’s 1850 Zu- 
sammenstellung noch anzuführen die Synonyme von T. angulata Ru». 
(p: 538) und die von T. undulata RuD. (p. 544). Es scheint mir zwar, 
daß die 7. angulata RuD., wie sie DIESING auffaßt, nach den Synonymen 
zu urteilen, die T. angulata Rup. nach KrRABRE’scher 1906 Auffassung, 
d. h. Taenia serpeniulus, ist. Ihre Synonyme gehören also eigentlich nicht 
hierher, sondern zu FH. serpentulus SCHRANK, wo ich sie anführe. Es 
herrscht hier eine große Konfusion, da auch Dundula oder deren Synonyme 
bald mit einseitigen, bald mit alternierenden Genitalporen beschrieben wird. 
Nach DiEsinG ist synonym T. undulata RuD., d. h. T. undula SCHRANK, 
T. serpentiformis non collaris GOEZE 1782. Die DusAarvın’sche T. angulata 
Rup. ist sicher synonym D. undula (SCHRANK). Andere Synonyme sind: 
Hymenolegis undulata Run. PARONA 1902. Vorz 1900 beschreibt diese 
Art unter den Namen Dilepis angulata Rv. und Dilepis undulata Bo. 


Die Cestoden der Vögel. 53 


Dilepis attenuata (Dus.) 1845, v. Linstow 1875 
Dilepis modiglianii (PaRoNA) 1898. !) 


Gatt. Trichocephaloides SINITZINE 1896. 


Rostellum mit einfacher Hakenkrone. Genitalpori 
einseitig und etwas dorsal verschoben. Hoden wenig 
zahlreich am Hinterrand der Proglottis. Uterus sack- 
förmig. Eier wenig zahlreich. In Vögeln. 


Typische Art: Trichocephalordes megalocephala (KRABBE) 1869. 
(Synonym: T. inermis SINITZINE 1896.) 


Dieses Genus wurde von SısıtzınEe nach einer sehr unvoll- 
ständigen Untersuchung von 7. inermis aufgestellt. Ich konnte 
nachweisen (FuHrmann 1901la), daß diese Art identisch ist mit 
T. megalocephala KRABBE. CLerc 1903 gab dann eine bessere Diagnose 
des Genus. 


Charadriiformes. 


Trichocephaloides megelocephala (KRABBE) 1869 ?), Cuerc 1902, 1903, 
FUHRMANN 190la, (Trichocephaloides inermis SIN.). 
Trichocephaloides birostrata CLERC 1906b. 


Gatt. Lateriporus FUHRMANN 1907a. 


Rostellum bewaffnet mit einem Kranz von Haken. 
Genitalpori einseitig. Hoden am Hinterende der Pro- 
glottis, aber auch seitlich von den weiblichen Ge- 
schlechtsdrüsen. Uterus sackförmig. In Vögeln. 


Typische Art: ZLateriporus spinosus FUHRMANN 1907a. 


Anseriformes, 


Lateriporus biuterinus FUHRMANN 1908b, 
Lateriporus teres (KRABBE) 1869, FUHRMANN 1907a. 
Lateriporus propeteres FUHRMANN 1907a. 


Dilepis brachyarthra CHOLODKOVSKY 1906 ist ebenfalls synonym mit obiger 
 Taenie. Hierher gehört wohl auch nach CHOLODKOVSKY's Angaben 
Hymenolepis pyramidalis SINITZINE. 

1) Synonym: Hymenolepis modiglianii PaRroNA 1898. 

2) Synonym T. inermis Sınırz. 1896 (s. FUHRMANN 190la). 


54 O0. FuHrmann. 


Ciconiiformes. 


Lateriporus spinosus FUHRMANN 1908b. 


Gatt. Choanotaenia RaıLnLer 1896 (Conn 1899a). 


Scolex klein, bewaffnet mit einem Rostellum, das 
eine einfache Hakenkrone trägt. Strobila aus vielen 
Gliedern bestehend, die letzten oft länger als breit. 
Genitalporiunregelmäßig abwechselnd. Geschlechts- 
gänge gehen zwischen den Wassergefäßen durch. 
Hoden am Hinterende der Proglottis Uterus sack- 
förmig. In Vögeln. 


Typische Art: Choanotaenia galbulae (ZEpEr) 1803 (Coun 1901). 


Raser 1896 schuf für 7. infundibulum Brock (T. infundibuli- 
formis GOEZE), die er anfangs in das Genus Drepanidotaenia gestellt 
hatte, das neue Genus Choanotaenia RAıLLer, als dessen Typus obige 
Art bezeichnet ist. Coun 1899a gab dann eine gute Diagnose des- 
selben und stellte in das Genus noch als sichere Vertreter 7. porosa 
Ru». und fälschlich auch 7. serpentulus SCHRANK, welch letztere eine 
Hymenolepis-Art ist. In seiner großen Arbeit 1901 beschreibt er 
genauer Oh. galbulae (ZEDER 1803), Ch. gongyla Coun, Ch. porosa (RuD.) 
und Ch. infundibulum (BuocaH). Nun hat es sich aber gezeigt, dab 
letztere Art, wie aus Crery’s (1890) Beschreibung bereits hervorgeht 
und wie Crerc 1903 neuerdings nachgewiesen, die Charaktere des 
Genus Monopylidium FUHRMANN zeigt, dessen Typus M. musculosum 
FuHrmann ist. Es kann also diese Art nicht länger der Typus des 
Genus Choanotaenia bleiben, und es muß für dasselbe eine andere 
typische Art bezeichnet werden, als welche ich die von CoHx genauer 
beschriebene Oh. galbulae (ZEver 1803) Coun 1901 vorschlage. 


Apterygiformes. 


Choanotaenia apterygis (BENHAM) 1900.%) 


Galliformes. 


Ohoanotaenia campanulata FUHRMANN 1907a. 


1) Der Autor beschreibt diese Art unter dem Genusnamen Drepanido- 
laenia apterygis. 


Die Cestoden der Vögel. 55 


Charadriiformes. 


Choanotaenia paradoxa (RuD.)') 1809; KRABBE 1869, 1882, CLERC 1903 
Ohoanotaenia coronata (CEPLIN) 1829; KRABBE 1869 

Choanotaenia laevigata (RuD.)”) 1819, KRABBE 1869, Onerc 1906b 
Choanotaenia aegyptica (KRABBE) 1819, OLERC 1903 

Choanotaenia slesvicensis (KRABBE) 1882, CLERC 19053 

Choanotaenia embryo (KRABBE) 1869 

Ohoanotaenia stellifera (KRABBE) 1869); 1882 

Choanotaenia intermedia FUHRMANN 1908a 

Ohoanotaenia arquata CLERC 1906b. 


Lariformes. 


Choanotaenia porosa (Run.) 1809); KrapBE 1869, Conn 1901, 1903 
Ohoanotaenia inversa (Rup.) 1819) 

Choanotaenia sternina (KRABBE) 1869, CLERC 1903 

Choanotaenia dodecantha (KRABBE) 1869 

Choanotaenia gongyla CoHn 1901 

Choanotaenia rhynchopis FUHRMANN 1907a. 


Podiecipediformes. 


Choanotaenia bilateralis FUHRMANN 1907a. 


Anseriformes. 


Choanotaenia borealis (v. LInstow)®) 1905b. 


Coraeciiformes. 
Choanotaenia megacantha (Run.) 1819, KRABBE 1869 


1) Mit dieser Art ist wohl synonym Taenia chaotica GIEBEL 1866. 

Weiteres Synonym: Drepanidotaenia paradoxa Rup. PARronA 1899; 
SINITZINE 1896 hatte wohl nicht obige Art vor sich. 

2) T. laevigata RuD. ist nach RUDOLPHI synonym mit T. charadrü 
hiaticulae VIBORG 1795?. 

3) Als Anymenolepis stellifera KRABBE bezeichnet SInITZInE 1896 einen 
Cestoden, von welchem es sehr fraglich, ob der Autor wirklich diese Art 
vor sich hatte. 

4) Synonym: Drepanidotaenia porosa Rup. STOssIcH 1898. 

5) Diese Taenie istsynonym mit T.oligotoma Rup. 1819, welche RUDOLPHI 
mit dem Autornamen NITZSCH belegt; ebenso ist obige Art, wie meine 
Untersuchung des ÖOriginalmaterials gezeigt hat, identisch mit Taenia 
gennaria PARONA 1887a. 

6) Diese Taenie wurde von v. Linstow als Aporina borealis be- 
schrieben, sie ist aber, wie unsere Untersuchung der Originale gezeigt, 
eine typische C'hoanotaenia. 


56 O0. FuUHRMANN, 


Choanotaemia producta (KRABBE) 1869 !) 
Choanotaenia brevis CLERC 1902, 1903 
Choanotaenia crassitestata FUHRMANN 1907a 
Choanotaenia pauciannulata FUHRMANN 1907a. 
Uhoanotaenia asymmetrica FUHRMANN 1907a 


Passeriformes. 


O'hoanotaenia galbulae (ZEDER)?) 1803, Coun 1901 

Choanotaenia parina (Dus.)?) 1845, KRABBE 1869, CLERC 1906b 
CUhoanolaenia parvirostris (KRABBE) 1869 

Choanotaenia macracantha FUHRMANN 1907a. 


Gatt. Anomotaenia CoHn 19006. 
Synonym: Diplochetos v. LINsTow 1906a. 


Cestoden mit einem Rostellum bewaffnet mit zwei 
Hakenkränzen. Genitalporiunregelmäßig abwechselnd. 
Zahlreiche Hoden am Hinterende der Proglottis. In 
Vögeln. 


Typische Art: Anomotaenia microrhyncha (KRABBE 1869). 


v. Linstow 1906a beschreibt als Diplochetos n. g. eine Taenie 
mit doppelten Genitalporen, einfachen Geschlechtsdrüsen und Uterus- 
öffnung, welche von all diesen Charakteren nicht einen besitzt, sondern, 
wie unsere Untersuchung des Originalmaterials gezeigt, eine Anomo- 
taenia ist! 

Die Arten dieses Genus sind sich anatomisch sehr ähnlich. 
Cuerc 1903 vereinigt ohne weitere Erklärung die Vertreter der 
Genera Anomotaenia und Choanotaenia unter dem Gattungsnamen 
Choanotaenia, was nicht zutreffend ist. Dagegen muß wohl Anomo- 
taenia mit Dilepis vereinigt werden. 


Apterygiformes. 
Anomotaenia minuta (BENHAM)t) 1900. 


1) Nach KRABBE ist Oh. produecta KRABBE vielleicht identisch mit 
T. crenata GOEZE, nach andern Autoren ist sie identisch mit Dav. eruciata 
oder T. crateriformis GOEZE. 

2) Synonym T. serpentulus (SCHRANK) ex. p. Von RUDOLPHT ist 
diese Taenie genannt Taenia orioli galbulae Run. 1809; weiteres Synonym: 
COhoanotaenia serpentulus (SCHRANK) COHN 1899a. 

3) Synonym: Drepanidotaenia parina DUJARDIN, STOSSICH 1898. 

4) BENHAM beschreibt diese Art unter dem Gattungsnamen Drepanido- 
taenia. 


Die Cestoden der Vögel. 57 


Ralliformes. 
Anomotaenia pyriformis (WEDL) 1856; KrABBE 1869. 


Charadriiformes. 


Anomotaenia stientorea FRÖLICH 1799); KrABBE 1869 (T. variabılıs 
Rup.), CLERC 1903 (Choanotaenia varıabilis) 

Anomotaenia nymphaea (SCHRANK) 1790 ?); KRABBE 1869 

Anomotaenia globulus (Wen) 1856°); KrABBE 1869, Cuerc 1903 
(C'hoanotaenia) 

Anomotaenia arionis (v. SIEBOLD) 1850); KrABBE 1869, CLerc 1905 
(Choanotaenia) 

Anomotaenia bacilligera (KRABBE) 1869, 1882 

Anomotaenia citrus (KRABBE) 1869), OLERC 1903 (Choanotaenia) 

‚Inomotaenia clavigera (KRABBE)®) 1869; Comn 1901 

Anomotaenia microrhyncha (KRABBE) 1569, Conn 1901 

Anomotaenia platyrhyncha (KRABBE) 1869; CoHnn 1901 

Anomotaenia microphallos (KRABBE) 1869 °); CLErc 1903 (Choanotaenia) 

Anomotaenia ericetorum (KRABBE) 1869 

Anomotaenia micracantha (KRABBE) 1869 

Anomotaenia cingulata v. Linstow 1905b, siehe auch Anm. 6 

Anomotaenia volvulus (v. Linstow) 1906a °) 

Anomotaenia macrocanthoides FUHRMANN 1907a 

Anomotaenia macrocantha FUHRMANN 1908b. 


1) Rupoupnr (1809) gibt an, daß seine T. variabilis Rup. identisch 
ist mit 7. sientorea FrÖLICH 1799, so daß nach den Nomenklaturregeln 
der letztere Name anzunehmen ist. Nach DıesinG 1850 soll ferner T'. ser- 
pentiformis BATSCH (ex parte) und Halysis vanelli ZEDER 1803 mit obiger 
Taenie synonym sein. Weiteres Synonym: Choanotaenia varıabilis RUD. 
CLErRC 1903. J 

2) Mit A. nymphaea SCHRANK ist synonym Halysis nymphaea ZEDER 
1803. 

3) Synonym: Choanotaenıa globulus (WEDL) CLERC 1903. 

4) Synonym: Choanotaenia arionis (SIEBOLD) UÜLERC 1903. 

5) Synonym: COhoanotaenia eitrus (KRABBE) OLERC 1903. 

6) Synonymie: Diese Art ist vielleicht synonym, wie die Unter- 
suchung der Originale gezeigt, mit Dilepis eingulata v. Lınstow 1905b, 
welche auf jeden Fall eine Anomotaenia und, da die Haken verloren, nicht 
genau zu identifizieren ist. 

7) Synonym: Choanotaenia microphallos (KRABBE) CLERC 1903. 

8) Synonym: Diplochetos volvulus v. Linstow 1906a. Die Beschreibung 
ganz falsch. 


58 O0. FUHRMARN, 


Lariformes. 


Anomotaenia tordae (FABRICIUS) 1780'): KrABBE 1869 (T. armillaris 
RuD.) 

Anomotaenia larina (KRABBE) 1869 

Anomotaenia socialis (KRABBE) 1869 

Anomotaenia campylacantha (KRABBE) 1869. 


Cieconiiformes. 


Anomotaenia aurita (RuD.) 1819 

Anomotaenia discoidea (VAN Ben.)?) 1868, KraBBE 1869 (T. multiformis 
CREPL.) 

_Anomotaenia glandularis FUHRMANN 1905a. 


Aceipitres. 


Anomotaenia trapezoides FUHRMANN 1906a 
Anomotaenia mollis (VoLz) 1900 (Taenia mollis). 


Coceygiformis. 


_Anomotaenia mutabilis (Rup.) 1819 
Anomotaenia acollum FUHRMANN 1907a. 


Passeriformes. 


Anomotaenia quadrata (RuD.) 1819 

Anomotaenia eyathiformis (FröLıcH) 1791 3), KrABBE 1869 

Anomotaenia constrieta (MoLINn) 1858 *), KRABBE 1869, 1882; Vorz 1900; 
CoHNn 1901 (A. puncta v. LINSTOw), CLERC 1903 


1) Der Name T. armillaris Rup. muß durch A. tordae FABRICIUS 
ersetzt werden, da die beiden Artnamen denselben Cestoden benennen und 
ersterer der ältere ist. ZEDER nennt den Cestoden Halysis tordae ZEDER 
1803. 

2) Die Taenia multiformis CREPL. ist, wie COHN nachgewiesen, eine 
Hıymenolepis-Art (s. d.), so daß also T. multiformis CREPLIN KRABBE 1869 
einen andern Namen anzunehmen hat; sie scheint mir identisch mit T. 
discoidea BEN. 

3) Diesing gibt als Synonym zu A. cyathiformis die T. hirundinis 
ubricae GOEZE 1782 an, was aber wohl nicht zutreffend; es sollte übrigens 
heißen T. hörundinis SCHRANK 1788, denn GOEZE hat die Taenie gar nicht 
benannt, sondern SCHRANK ist der Autor dieser Art. Weiteres Synonym: 
Drepanidotaenia eyathiformis FRÖL. PARONA 1899. 

4) Taenia puneta vw. Linstow 1872b, 1890 ist ein Synonym 
von A. constricta, ebenso ist nach VOLZ synonym zu obiger Art T. affinzs 
KRABBE, T. coronina KRABBE und T. gutturosa GIEBEL. Ferner sind 


Die Cestoden der Vögel. 59 


Anomotaenia depressa (v. SIEBOLD) 1836), KRABBE 1869, v. Linstow 
1896, FUHRMANN 1895, 1899c 
Anomotaenia dehiscens (KRABBE) 1882 
Anomotaenia borealis (KRABBE) 1869, CLERC 1906b 
Anomotaenia trigonocephala (KRABBE) 1869 
Anomotaenia vesiculigera (KRABBE) 1882 
Anomotaenia ovalacincata (v. Linstow) 1877a 
Anomotaenia brevis (CLERC)?) 1903 
Anomotaenia brasiliensis FUHRMANN 1907a 
Anomotaenia hirundina FUHRMANN 1907a. 
Anomotaenia cyathiformoides FUHRMANN 1908b 
Anomotaenia undulatordes FUHRMANN 19085 
Anomotaenia isacantha FUHRMANN 1908b 
Anomotaenia penicillata« FUHRMANN 1908hb 
Anomotaenia (?) paueitesticulata FUHRMANN 1908b 


Gatt. Fuhrmannia ParonA 1901. 


Scolex mit Rostellum, dasbewaffnet von einer 
doppelten Krone von Haken. Strobila aus wenigen 
Proglottidenbestehend; Glieder breiter als lang. 
Hoden am Hinterende der Proglottis gelagert. Uterus 
sackförmig. Genitalporiregelmäßig alternierend. In 
Vögeln. r 


Typische Art: Fuhrmannia brasiliensis ParoxAa 1901. 


Charadriiformes. 


Fuhrmannia alternans (CoHn) 1900b. 


Coraeiiformes. 


Fuhrmannia brasiliensis PARONA 1901. 


Gatt. Leptotaenia Con 1901. 


Cystoidotaenien mit nur einem Hakenkranze und 
regelmäßig alternierenden Genitalporen. Der Scolex 
ist relativ sehr groß. Collum fehlt. Die kurze Pro- 


noch folgende Synonyme zu nennen: Drepanidotaenia constrieta MOLIN 
PAroNnA 1899, Anomotaenia puncta (v. LINSTOW) CoHn 1901. 

1) Mit Anom. depressa v. SIEBOLD ist vielleicht synonym mit 7. pustulum 
GIEBEL 1866. 

2) Vom Autor als Choanotaenia beschrieben. 


60 O. Funrmann, 


glottidenkette besteht aus wenigen Gliedern. Der 
Cirrusbeutel ist von bedeutender Größe Die Hoden 
liegen einseitig in einem dem poralen Rande ge- 
näherten Hodenfeld. Der Uterus ist sackförmig und 
füllt die Proglottis aus. 


Typische Art: Leptotaenia ischnorhyncha LüHnE 1898 (Coun 1901). 


Phoenicopteri. 
Leptotaenia ischnorhyncha (LÜHE) 1898), Conn 1901. 


Gatt. Amoebotaenia GoHn 1899a. 


Scolex verhältnismäßig groß, bewaffnet mit einem 
Rostellum, das eine einfache Hakenkrone trägt. Stro- 
bila kurz. Die wenigen Glieder viel breiter als lang. 
Geschlechtsöffnungenregelmäßigalternierend. Hoden 
zahlreich am Hinterrande des Gliedes. Uterus sack- 
förmie.! In. Vögeln. 

Typische Art: Amoebotaenia cuneata (v. Linstow) 1872b. 


Synonym: A. sphenoides RAILLIET 1892. 


Galliformes. 
Amoebotaenia eumeata (v. Linstow) 1872b ?), STILES 1896, Dieranotaenia 
sphenordes (RAILLIET), CoHNn 1901. 
Charadriiformes. 


Amoebotaenia brevis (v. LINSTOW) 1884 
Amoebotaenia vanelli FUHRMANN 1907a 
Amoebotaenia brevicolliss FUHRMANN 1907a. 


Gatt. Liga WEImLAND 1859. 
In Vögeln. 
Typische Art: Liga punctata W EINLAND. 
Nach mündlichen Angaben von Ransom (Washington), welcher 
1) Synonym Amoebotaenia ischnorhyneha (LÜHE) CoHNn 1899a. 


2) Dieranotaenia sphenoides RAILLIET 1892 ist synonym mit obiger 
Art; ebenso Amoebotaenia sphenoides (RuD.) CoHn 1899a. 


Die Cestoden der Vögel. 61 


diese Taenie WEINLAND’s wieder aufgefunden, ist dieser Cestode in 
die Nähe von Amoebotaenia zu stellen. Eine Diagnose kann erst ge- 
geben werden, wenn die Arbeit Ransom’s erschienen ist. 


Coraeiiformes. 


Liga punctata WEINLAND 1859. 


Gatt. Parvirostrum FUHRMANnN 1908h. 


Kleine Taenien mit undeutlicher Gliederung der 
Strobila Scolex groß, mit kleinem Rostellum be- 
waffnet, mit zwei Kränzen von Haken. Genitalpori 
unregelmäßig abwechselnd. Geschlechtsdrüsen sehr 
klein; Hoden seitlich; Keimstock und Dotterstock 
poral verschoben. Uterus sackförmig. 


Typische Art: Parvirostrum retieulatum FUHRMANN 1908h. 


Passeriformes. 


Parwrostrum retieulatum FUHRMANN 1908b. 


Gatt. Oyelustera FUHRMANN 1901c. 


Rostellum mit einer doppelten Krone von Haken. 
Genitalöffnungen regelmäßig abwechselnd. Die Ge- 
schlechtsgänge gehen zwischen den beiden Längs- 
excretionsstämmen durch. Sie münden in einen sehr 
muskulösen Canalishermaphroditus. Hoden zahlreich 
dorsal über das ganze Markparenchym verteilt. Uterus 
ringförmig mit sekundären Verzweigungen. Längs- 
muskulatur in drei Lagen. In Vögeln. 


Typische Art: Oyelustera capito (Ru». 1819). 


Cieoniiformes. 


Uyelustera capito (Run.) 1819, KraBBE 1869, FUHRMANN 1900e 
Oyelustera fuhrmanni CLERC 1906b. 


Gatt. Laterotaenia FUERMANnN 1906a. 


Cestoden miteinfachem, mit doppeltem Hakenkranz 
bewaffnetem Rostellum. Die Geschlechtsgänge gehen 


62 O0. FUHRMANN, 


regelmäßig abwechselnd zwischen den Wassergefäßen 
und unter dem Hauptnerven durch zum Gliedrand. 
Der größte Teil des Markparenchyms ist frei von Ge- 
schlechtsdrüsen. Die zahlreichen Hoden beiderseits 
ganz seitlich gelagert; ebenso die einfachen weib- 
lichen Geschlechtsdrüsen. Der Uterus ist sackförmig, 
das ganze Markparenchym erfüllend. In Vögeln. 


Typische Art: Laterotaenia nattereri FUHRMANN !) 1906a. 


Aceipitres. 


Laterotaenia nattereri FUHRMANN 1906a. 


Gatt. Proorchida FUHRMANN 1908b. 


Scolex bewaffnet mit zwei Kränzen von Haken. 
Genitalporen einseitig. Hoden vor den weiblichen 
Geschlechtsdrüsen gelegen. Uterus stark gelappt (). 


Typische Art: Proorchida lobat« FUHRMANN 19086. 
Ciconiiformes. 


Proorchida lobata FUHRMANN 1908b. 


Gatt. Angularia Cuerc 1906b. 


Gestoden,deren Rostellum bewaffnetistvon Haken, 
welche in mehrfach gebrochener Zickzacklinie dis- 
poniert sind. Genitalöffnungen unregelmäßig ab- 
wechselnd. Die Geschlechtsgänge gehen über den 
Längswassergefäßen durch. Uterus unregelmäßig 
selappt. 


Typische Art: Angularia beema ULerc 1906b. 
Passeriformes. 


Angularia beema CLERC 1906b. 


Gatt. Cyelorchida FuUHrMmann 1907a. 


Cestoden mit einem doppelten Kranz von Haken, 


1) Bei FunrMmAnN 1906a wurde die Taenie irrtümlicherweise L. natteri 
statt L. nattereri FUHRMANN genannt. 


Die Cestoden der Vögel. 63 


mit mächtiger Basis und kleinem Hakenteil, be- 
waffnet. Genitalöffnungen einseitig. Geschlechtsgänge 
zwischen den Wassergefäßben durchgehend. Der 
Cirrusbeutel auf einer großen Papille durch einen 
engen Kanal in die Genitalcloake mündend. Hoden 
sehr zahlreich, einen Kranz um die weiblichen Ge- 
schlechtsdrüsen bildend. Uterus anfangs ganz ven- 
tral, seitlich zwischen den Wassergefäßen durch ins 
Rindenparenchym dringend. 


Typische Art: Oyelorchida omalaneristrota (WEDL). 


Cieoniiformes. 


Oyelorchida omalancristrola (WEDL) FUHRMANN 1907a. 


Gatt. Acanthocirrus FUHRMANN 1907a. 


Taenien mitbewaffnetem Rostellum. Genitalporen 
einseitig; Geschlechtsgänge zwischen den Wasser- 
gefäßendurchgehend. Cirrusmiteinem oder zweiPaar 
an seiner Basis fixierten, in besondern Taschen 
liegenden mächtigen Stacheln. Hoden wenig zahlreich. 
Uterus sackförmig. 


Typische Art: Acanthocirrus macrorostratus FUHRMANN 1907a. 


Ciconiiformes, 


Acanthoeirrus cheilaneristrota (WentL) 1856'); Crerc 1906b [Dilepis 
macropeus (WEDL)] 


Acanthoeirrus macropeus (WEDL) 1856 !); KrABBE 1869. 


1) WEDL beschreibt unter dem Namen T. cheilaneristrota var. brevi- 
rostris und T. cheilaneristrota var. longirostris 2 ÜCestoden, welche ver- 
schiedene Arten sind. Die Bewaffnung der erstern ist unvollständig be- 
kannt; die Haken zeigen einige Ähnlichkeit mit den kleinen Haken 
von T. macropeus WEDL, wie sie KRABBE 1869 zeichnet. Die Tuenia 
maeropeus WEDL scheint mit T. cheilameristrota var. longirostris identisch 
zu sein, soviel aus der unvollständigen Charakterisierung von WEDL, 
den nach dem Originalmaterial angefertigten Zeichnungen von T. macropeus 
von KRABBE 1869 und der Beschreibung von CLERC 1906b hervorzugehen 
scheint. Die Länge des Wurmes (6—8 mm), die Zahl der Haken und wohl 
auch die Form ist dieselbe. T. cheilaneristrota var. brevirostris scheint 
mir dagegen identisch mit der von ÜLERC als Dilepis macropeus be- 


64 OÖ. FuHRMmanN, 


Passeriformes. 


Acanthoeirrus macrorostratus FEUHRMANN 1907a. 


2. Subfam. Dipylidiinae RAILLET. 


Dilepiniden, deren Uterus wie bei Davaineen sich 
in zahlreiche Parenchymkapseln auflöst, welche eine 
oder mehrere Oncosphären enthalten. In Säugetieren, 
Vögeln und Reptilien. 


Gatt. Dipylidium R. LEUCKART 1863. 


Rostellum mit mehreren Ringen vonalternierenden 
Haken besetzt. Genitalporigegenständig;Geschlechts- 
apparat doppelt. Der Uterus löst sich in einzelne ein 
oder mehrere Eier einschließende Säckchen auf. Die 
reifen Glieder sind meist länger als breit. In Säuge- 
tieren und Vögeln. 


schriebenen Art; beide sind ca. 60 mm lang und zeigen denselben eigen- 
tümlichen Bau der Genitalcloake, welcher sich übrigens auch nach WEDL 
bei der Varietät longirostris obiger Taenie finden soll. CLERC gibt selbst 
an, daß die Haken seiner Dilepis macropeus größer sind (irrtümlich ver- 
wechselt er die Größenangaben von KRABBE mit den seinigen), und ein 
Vergleich zeigt auch, daß die Form eine etwas andere ist. ÜLERC’s 
D. macropeus entspricht also in der Form und Größe der Haken nicht 
dem Typus; außerdem ist dieser Cestode etwa 1l0mal so lang wie die 
typische Art, er entspricht aber in der Länge und dem anatomischen Bau 
der Cloake vollständig der T. cheilaneristrota var. brevirostris WEDL. Es 
liegen also 2 Arten vor, eine T. cheilancristrota WEDL (synonym T. ch. 
var, brevirosiris WEDL und T. macropeus CLERC) und eine T. macropeus 
WEDL (synonym T. cheilaneristrota var. longirostris WEDL). Mit dieser letztern 
Art ist vielleicht die von RUDOLPHI als T. unguwieula BRAUN beschriebene 
Art identisch. Die Wirte sind bei diesen Arten allerdings verschieden. 

Nach WEDL sollen die Genitalpori bei 7. macropeus und T. cheilan- 
eristrota wechselständig sein, während ULErc 19065 sie als einseitig be- 
zeichnet und die Art deshalb in das Genus Diülepis stellt, ansonst die 
beiden Arten in das Genus Anomotaenia gestellt werden müßten. 

Es ist sehr wahrscheinlich, daß WEDL nicht richtig beobachtet, denn 
auch bei T. multistriata spricht er von alternierenden Geschlechtsöffnungen, 
während KRABBE an den WEpt’schen Originalpräparaten gesehen, daß sie 
einseitig sind. 


Die Cestoden der Vögel. 65 


Typische Art: Dipylidium caninum (Liss.). 

Von diesem bis jetzt nur aus Säugetieren bekannten Cestoden- 
Genus habe ich 2 Arten bei Vögeln gefunden. Leider ist bei keiner 
der beiden Species die Bewaffnung des Rostellums vollständig er- 
halten, so daß ich nicht sicher angeben kann, ob mehrere Kränze 
von Haken vorhanden, dagegen ist der Bau des Geschlechtsapparats 
vollkommen übereinstimmend mit demjenigen der Säugetierdipylidien. 


Columbiformes. 
Dipylidium columbae FUHRMANN 1908b. 


Aceipitres. 
Dipylidium avicola FUHRMANN 1906a. 


Gatt. Monopylidium FUHRMANN 1899e. 


Rostellum mit einer doppelten Muskeltasche, be- 
waffnet mit einem einfachen Kranze von Haken. Saug- 
näpfe unbewaffnet. Geschlechtsorgane unregelmäßig 
abwechselnd ausmündend. Die @eschlechtsgänge gehen 
zwischen den Längswassergefäßen durch. DieHoden 
liegen hinterden weiblichenGeschlechtsdrüsen. Uterus 
stark verzweigt, löst sich in Parenchymkapseln auf, 
welche meist eine Oncosphäre enthalten In Vögeln. 


Typische Art: Monopylidium musculosum FUHRMANN 1896. 


Galliformes. 


Monopylidium infundibulum (BLochH) 1779), KRABBE 1869 (T. infundibuli- 
formis GOEZE), CRETY 1890, Coun 1901 (C’hoanotaenia infundibulum), 
StILES 1896 (Drepanidotaenia infundibuliformis), CLERrc 1903. 
Ransom 1905 (Choanotaenia infundibuliformis). 


1) Diese Art wurde meist mit dem Namen T. infundibuliformis GOEZE 
benannt, die richtige Artbezeichnung aber ist T. infundibulum BLOCH. 
Nach StitLes 1896 und PıronA 1894 haben wir noch folgende Synonyme: 
T. avium PaLtAs 1701, Globus stercoreus ScoroLı 1772 und T. serrata 
Rosa 1794. Die Artnamen T. euneata BLOCH, T. conoidea SCHRANK ge- 
hören nicht zu den Synonymen obiger Taenie, wie STILES glaubt, denn sie 
bezeichnen Entencestoden, während M. infundibulum nur in Hühnervögeln 
vorkommt. Weitere Synonyme sind: Alyselminthus infundibuliformis 
ZEDER 1800, Halysis infundibuliformis ZEDER 1803, Drepanidotaenia in- 


Zool. Jahrb., Supplement X. B) 


66 O0. FuHRMAnN 


Ralliformes. 
Monopylidium marchali (MouLA) 1907. 


Charadriiformes. 


Monopylıdium laevigatum (Run.) 1819 

Monopylidium cinguliferum (KRABBE)!) 1869, CLerc 1902, 1903 
Monopylidium macracanthum FUHRMANN 1907a 

Monopylidium cayennense FUHRMANN 1907a 

Monopylidium secundum FUHRMANN 1907a 

Monopylidium rostellaium FUHRMANN 1908b. 


Passeriformes. 


Monopylidium crateriforme (GOEZE)?) 1782; KrABBE 1869, FUHRMANN 
1899e 

Monopylidium musculosum FUHRMANN?) 1896 (Davainea (?) musculosa 
FUHRM.); FUHRMANN 1899c (Monopylidium musculosum) 

Monopylidium unicoronatum FUHRMANN 1908b 

Monopylidium passerinum FUHRMANN 1907a. 


3. Subfam. Parutrinae. 


Dilepiniden mit einem dem Uterus anliegenden 
parenchymatösen Paruterinorgan, in welches die Eier 
in ganz reifen Proglottiden eindringen.. Es entsteht 
dann eine die Oncosphären enthaltende Parenchym- 
kapsel. In Säugetieren und Amphibien. 


fundibuliformis GOEZE (STILES 1896, Stossich 1898, RAILLIET 1896), 
C'hoanotaenia infundibulum CoHun 1899a. 

Nach RAILLIET und COHN gehört diese Taenie in das Genus Ü'hoano- 
taenia, doch haben unsere Untersuchungen sowie die von ÜLERC 1903 ge- 
zeigt, daß wir es mit einem typischen Vertreter des Genus Monopylidıum 
zu tun haben (s. auch Ühoanotaenia). 

Nach BLANCHARD 1898 ist Taenia lagenicollis MEGNIN identisch mit 
M. infundibulum (BLoCh). 

1) PaARONA beschrieb als T. marchiüi ParoNnA 1887a einen Oestoden,, 
welcher, wie mir die Untersuchung des ÖOriginalmaterials gezeigt hat, 
identisch ist mit M. cinguliferum KRABBE. 

2) Sollte, wie DIESInG 1850 angibt, T. erateriformis GOEZE synonym sein 
mit T. erenata GOEZE 1782, so müßte letzterer Name angenommen werden, 
da T. crenata GOEZE vor T. crateriformis beschrieben ist (s. auch Davainea 
cruciala RuD.). ZEDER benennt diese Art Halysis crateriformis ZEDER 
1803. 

3) Von mir ursprünglich als Davainea (?) musculosa FUHRMANN be- 
schrieben. 


Die Cestoden der Vögel. 67 


Gatt. Paruterina FUHRMANN 1906a. 


Scolex mit einem einfachen von einem doppelten 
Kranzvon Haken bewaffneten Rostellum. Geschlechts- 
öffnungen einseitig oder unregelmäßig abwechselnd. 
Hoden hinter und neben dem zweiflügligen Keim- 
stock. Dem Uterus ein Parenchymzapfen, Paruterin- 
organ, vorn aufsitzend, in welches die Ocnosphären 
meist erst in abgelösten Gliedern eintreten. 


Typische Art: Paruterina angustata FUHRMANN 1906a. 


Aceipitres. 
Paruterina candelabraria (GOEZE) 1782'); KraBBE 1869, WOLFFHÜGEL 
1899a, 1900a 
Paruterina angustata FUHRMANN ?) 1906a, 


Passeriformes. 
Paruterina parallelepipeda (Rup.) 1809); KrABBE 1869. 


Gatt. Biuterina FUHrRMANnN 1902a. 


Cestoden mit doppelter Hakenkrone an einem ein- 
fachgebauten Rostellum. Hakenform dreieckig. Geni- 
talöffnungen unregelmäßig abwechselnd. Genital- 
gänge gehen zwischen den Längsgefäßben des Excre- 
tionssystems durch. Uterus anfangs einfach, dann 
mehr oder weniger vollständig zweigeteilt. Die Omo- 
sphären werden in ein vorn gelegenes Paruterin- 
organ gepreßt, das eine Uteruskapsel bildet. In 
Vögeln. 


1) Synonymie: Halysis candelabraria ZEDER 1803. 

2) Diese Art ist wohl nach Einsicht der Originale synonym mit der Tnenia 
strigis Rup. 1819; sie stammt sehr wahrscheinlich aus demselben Vogel, 
dessen Parasiten ich in der Wiener Sammlung untersucht habe. Auf jeden 
Fall ist aber die RupoLpHTI'sche Art nicht, wie DiesingG 1550 glaubt, 
identisch mit P. candelabraria (GOEZE). 

3) Nach Untersuchung der Originale ist diese Art in das Genus 
Paruterina zu stellen. Synonym: Drepanidotaenia parallelepipeda (RuD.) 
SrossicHh 1898. 


5* 


68 


OÖ. FUHRMARN, 


Typische Art: Döuterina clavulus (von Linstow) 1888 


(synonym Böuterina paradısea FuUHRMANN 1902a). 


Anseriformes. 


(?) Biuterina longiceps RupoLpHı 1819. 


Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 


Biuterina 


Coraeciiformes. 


meropina (KRABBE) 

meropina var. macrankıstrota FUHRMANN 1908a 
lobata FUHRMANN 1908a 

rectangula FUHRMANN 1908a 

trapexoides FUHRMANN 1908a. 


Passeriformes. 


longiceps (RupoLPpHı) 1819, KrABBE 1869, FUHRMANN 1908a 


Biuterina campanulata (RupoLpHi) 1819, KRABBE 1869, FUHRMANN 1908a 


Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 
Biuterina 


triangula (KRABBE) 1869, FUHRMANN 1908a 

clavulus (vw. Linstow) 1888), FUHRMANN 1908a 
trapezoides FUHRMANN 1908a 

distineta FUHRMANN 1908a 

trigonacantha FUHRMANN 1908a 

passerina FUHRMANN 1908a ?), CLERC 1906b (B. meropina) 
globosa FUHRMANN 1908a 

motacılla FUHRMANN 1908a 


Biuterina (?) planirostris (KRABBE) 1882. 


Gatt. Culeitella FUHRMAnN 1906a. 


Scolex mit einem einfachen Rostellum, bewaffnet 


mit einem doppelten Kranz von Haken. 
einseitig oder unregelmäßig abwechselnd. 
schlechtsgänge gehen 


Genitalporen 
Die Ge- 
zwischen den beiden Excre- 


tionsgefäßen durch. Vor dem Uterus liegt eine paren- 
chymatöse Masse, in welche wohl() die Eier sehr spät 
gedrängt werden. Besonders charakteristischist, daß 


1) BLANCHARD 1891la glaubte, daß T. clavulus, die sehr mangelhaft 
beschrieben, vielleicht eine Davainea sei; sie ist nach unserer Unter- 
suchung der Originale synonym mit der von uns 1902a beschriebenen D. para- 
disea FUHRMANN. 

2) Diese Art ist synonym mit der B. meropina (KRABBE) CLERC 1906b, 
indem Zahl, Form und Größe der Haken nicht der wirklichen T. meropina 
KRABBE’s entsprechen. ÜLERC beschreibt dieselbe als aus Eimberiza_ citri- 
nella stammend. 


Die Cestoden der Vögel. 69 


auf der einen Seite dasenge Wassergefäß dorsal vom 
weiten, auf der entgegengesetzten Seite aber die um- 
sekehrte Disposition der Längsgefäßbe deutlich aus- 
seprägt ist. 

Typische Art: Ohleitella rapacicola FUHRMANN 1906a. 


Aceipitres. 


Ouleitella rapacıcola FUHRMANN 1906a 
Ouleitella erassa FUHRMANN 1906a 


Gatt. Rhabdometra ÜHOLODKOYSKY 1906. 


Scolex unbewaffnet, ohne Rostellum; Genitalporen 
unregelmäßig abwechselnd; die ersten Glieder sehr 
kurz, die letzten länger als breit; Hoden zahlreich im 
hintern Teil des Gliedes; Uterus von der Form eines 
medianen Zylinders, vorn ein lamellöses Paruterin- 
organ tragend. Die Geschlechtsgänge gehen zwischen 
den Wassergefäßen durch. 


Typische Art: Rh. tomica Cmouop. 1906. 


Galliformes. 


Rhabdometra tomica CHOLODKOVSKY 1906 
Rhabdometra nigropunctata (CRETY) 1890; StıLes 1896. 


Gatt. Metroliasthes Ransom 1900. 


Scolex ohne Rostellum. Geschlechtsöffnungen un- 
regelmäßig abwechselnd. Vor dem Uterus ein paren- 
chymatöses Paruterinorgan, in welches die Onco- 
sphären frühzeitig eintreten. 

Typische Art: Metroliasthes lucida Ransom 1900. 


Galliformes. 
Metroliasthes lucıda Ransom 1900; Ransom 1905. 


Gatt. Anonchotaenia CoHun 1900b und 1901. 
Synonym: Amerina FUHRMANN 190lc. 


Scolex ohne Rostellum. Genitalöffnungen unregel- 
mäßigalternierend. Die Geschlechtsgänge gehen unter 


70 O0. FuHRMANN, 


den Exeretionsstämmen und dem Längsnerven durch. 
Hoden dorsal und in geringer Zahl. Die weiblichen 
Genitaldrüsen klein und oval. Dem Uterus liegt ein 
Paruterinorgan an, in welches die Oncosphären vom 
Uterus aus gepreßt werden; es bildet sich so eine 
Parenchymkapsel um dieselben. In Vögeln. 


Typische Art: Anonchotaenia globata (v. Linstow). 
Synonym: A. clava CoHn 1900b (s. S. 70 Anm.). 


Dieses Genus wurde von CoHn 1900b im Zoologischen Anzeiger 
kurz und unrichtig charakterisiert, so daß ich mich veranlaßt sah, 
das Genus Amerina zu begründen (FuHrmAnn 190le). Nach dem 
Erscheinen meines Aufsatzes erschien dann die große Arbeit Conn’s 
(1901), in welcher er die gegebene Diagnose berichtigt. Obige Dia- 
gnose ist von mir aufgestellt. Es herrscht in dieser Cestoden-Gruppe 
eine große Konfusion, weil in neuerer Zeit mehrere Autoren dieselbe 
Art unter verschiedenen Namen als neue Species beschrieben haben. 
v. Lisstow hat, wie die Untersuchung des ÖOriginalmaterials ge- 
zeigt, dieselbe Form in derselben Arbeit als 2, wenn nicht 3 neue 
Arten beschrieben (s. S. 70 in der Anmerkung). 


Cieoniiformes. 
? Anoncholaenia longiovata (FUHRMANN) 190le. 
Pici. 
Anonchotaenia conica FUHRMANN 1908a. 


Passeriformes. 


Anonchotaenia globata (vw. Linstow) 1879a’), CERRUTI 1901 (T. alaudae), 
CoHn 1901 (A. clava), FUHRMANN 1908a 


1) Diese Synonymie für diese Art ist, wie unsere Untersuchungen 
ergeben, eine sehr verwickelte. Zuerst gab CoHn 1900b eine unzutreffende 
anatomische Beschreibung dieser Taenie, welche er Anonchotaenia clava 
Conn 1900b nannte. Daraufhin gab ich auf Grund der Untersuchung 
derselben Art die Diagnose der neuen Gattung Amerina mit der Art 
A. inermis FUHRMANN 1901lc. Hierauf gab Con 1901 eine richtige mit 
der meinigen übereinstimmende Diagnose der Gattung und Art. In der 
Zwischenzeit gab CERRUTI eine gute Beschreibung seiner Amerina alaudae 
CERRUTI 1901, welche mit obigen Arten übereinstimmt. Nun hat aber 
v. Linstow 1879a in einer Arbeit 3 neue Üestoden benannt und sehr 
summarisch und für obige Autoren ohne Einsicht der Originale unkenntlich 


Die Cestoden der Vögel. 71 


Anonchotaenia bobiea CLERC 1903 }) 
Anonchotaenia oriolina CHOLODKOVSKY 1906 
Anonchotaenia longiovata (FUHRMANN) 1901c 
Anonchotaenia macrocephala FUHRMANN 1908a 
Anonchotaenia trochili FUHRMANN 1908a 
Anonchotaenia brasiliensis FUHRMANN 1908a. 


6. Fam. Hymenolepinidae. 


Cestoden mit selten unbewaffnetem Scolex, meist 
mit einem einen einfachen Hakenkranz tragenden 
Rostellum; Hals kurz; Glieder breiter als lang. Die 
Muskulatur bestehtauszweiLängsmuskellagen, einer 
innern Transversalmuskulatur, Dorsoventralmuskeln 
und häufige einer äußern Diagonalmuskulatur Die 
Genitalporenmündenimmer einseitig; die @eschlechts- 
geänge gehen über diebeiden Längsstämme des Wasser- 
sefäßsystems und den Längsnerven durch. Die Hoden 
in der Zahl von 1—4 Vas deferens immer verhältnis- 
mäßig kurz mit Samenblase. Der Uterus sackförmig; 
die Eier mit drei Hüllen. In Säugetieren und Vögeln. 


(att. Oligorchis FUHRMANN 1906a. 


Rostellum mit einfachem Hakenkranz. Genital- 
pori einseitig. Vier Hoden. Uterus sackförmig. 


Typische Art: Oligorchis strangulatus FUHRMANN 1906a. 


beschrieben. Die Untersuchung dieser Originale hat gezeigt, daß alle 
3 Arten, sicher aber 7. globata v. LiNST. und T. previceps v. LINSTOW, 
vielleicht auch seine T. rudolphiana (v. LINSTOW) unter sich identisch 
sind! Zugleich sind aber diese Arten identisch mit den obgenannten 
Arten, und es muß deshalb nach den Nomenklaturregeln die Art Anoncho- 
taenia globata (v. LINSTOW) genannt werden. Ich zähle nicht die vor 
globata beschriebene, als T. rudolphiana bezeichnete Art, weil dieselbe eine 
Junge Anonchotaenia ist, welche nur Spuren von Geschlechtsorganen besitzt. 
Synonym mit obiger Art ist wohl sicher die mangelhaft beschriebene 
T. elavata MArcHı 1869, welche auch nur in geschlechtslosem Zustand 
gefunden wurde. 

Weiterer Synonym: Metroliasthes inermis FUHRMANN, ParonaA 1901. 

1) CLERC benennt diese Art in seiner vorläufigen Mitteilung 1902 
Amerina inermis FUHRMANN. 


72 OÖ. FUHRMAnN, 


Aceipitres. 


Oligorchis strangulatus FUHRMANN 1906a. 


(Gatt. Hymenolepis WEINLANnD 1858. 


Scolex mit rudimentärem Rostellum oder mitein- 
fachem Hakenkranz bewaffneten wohlentwickelten 
Rostellum. Strobila kurzgliedrig. Genitalpori ein- 
seitie. Drei Hoden in jeder Proglottis. Uterus sack- 
förmig. In Säugetieren und Vögeln. 


Typische Art: Hymenolepis diminuta (Run. 1819). 


Dieses artenreiche Genus hat mannigfache Wechsel in der Be- 
nennung erfahren. Coun 1899a nannte diese Cestoden-Gruppe zu- 
nächst Diplacanthus WEINLAND mit den beiden Subgenera Lepidotrias 
WeıntAanp und Dilepis WEINLAND. Es konnten diese Namen’ aber 
nicht beibehalten werden, denn der Name Diplacanthus ist bereits. 
an einen Fisch vergeben, so daß für ihn der bereits auch von WEIN- 
LAND aufgestellte Name Aymenolepis in Kraft trat. Nach den Nomen- 
klaturregeln muß das typische Subgenus den Namen des Genus er- 
halten, so daß Lepedotrias fällt. Dilepis gehört nach der Unter- 
suchung des Typus gar nicht hierher, und es muß deshalb dieser 
zweite Untergenusname ebenfalls gestrichen werden. So gibt denn 
CoHnn 1900b folgende Benennung dieser Gruppe: Genus Hymenolepis 
WeıstanD, 1. Subgenus Aymenolepis WEINLAND, 2. Subgenus 
Drepanidotaenia RaıuLıer. Nun haben aber unsere Untersuchungen 
(FUHRMANN 1906b und c) gezeigt, daß die Subgenera Hymenolepis 
und Drepanidotaenia nicht aufrecht erhalten werden können. 

ÜLerc 1903 hat dann nachgewiesen, daß die Vertreter des Genus 
Echinocotyle BLANCHARD nichts anderes sind als Hymenolepis-Arten 
mit bewaffneten Saugnäpfen und daß das betreffende Genus als Sub- 
genus der Gattung Hymenolepis aufzufassen ist. 

Näheres über die sehr weitläufige Diskussion der Systematik 
dieser Gruppe bei CoHnn 1899a, b und c, 1900a und b, 1901, 1904. 
WOoLFFrHüGeEn 1899a und b. 1900a. CLerc 1903, FUHRMANN 1906b und c. 


Crypturiformes. 


Hymenolepis pauciovata FUHRMANN 1906b. 


Die Cestoden der Vögel. 13 


Galliformes. 


? Hymenolepis villosa (Buoch) 1782!); KRABBE 1882; CLERC 1906a 

Hıymenolepis linea (GOEZE) 1782); KrABBE 1869; WOLFFHÜGEL 1900a 

Hymenolepis exilis (DUJARDIN) 1845 ?) 

Hymenolepis carioca (MAGALHÄES) 1898 *); Ransom 1902; Ransom 1905 

Hymenolepis microps (DIESINnG) 1850 °); WOLFFHÜGEL 1900a (H. tetraonis 
WOLFFHÜGEL) 

Hymenolepis meleagris (CLERC) 1902 ®); 1903 

Hymenolepis musculosa (CLERc) 1902 ®); 1903 

Hymenolepis phasianina FUHRMANN 1907a. 


Ralliformes. 
Hymenolepis poculifera (v. LINSTOW) 1879b. 


Otidiformes. 


Hymenolepis villosa (BLocH) 1782); KRABBE 1869, WOLFFHÜGEL 1900a, 
CLERC 1906a 

Hymenolepis tetracis CHLODOKOYSKY 1906 ®); CLErc 1906a (H. dentatus 
CLERC) 

Hymenolepis ambigwus CLERC 1906a. 


1) Siehe. Zinleitung 8. 8. 

2) Synonymie: Alyselminthus linea ZEDER 1800, Halysıs linea ZEDER 
1803. 

3) Diese Taenie wurde von DUJARDIN unvollständig beschrieben. 
A1onomnG 1875 glaubte diesen Cestoden wieder gefunden zu haben, gibt 
aber ebenfalls nur eine sehr unvollständige Beschreibung, aus der aber 
hervorgeht, daß seine Art keineswegs T. exilis sein kann. Dagegen glauben 
wir diese Art wiedergefunden zu haben. 

4) Dieser Cestode wurde in der trefflichen Arbeit von STILEs 1896 
als T. sp. COnARD beschrieben; KOwALEVSKI 1902a zitiert denselben als 
T. conardi ZürNn 1898. MAGALHAES 1898 beschrieb, wie RANSOM nach- 
wies, dieselbe Art als Davainea carioca. RansoMm 1905 gibt endlich eine 
gute Beschreibung derselben und zeigt, daß es eine AHymenolepis-Art ist. 

5) Die Untersuchung des Originalmaterials von T. microps DIES. er- 
gab, daß dieser Cestode identisch ist mit A. tetraonis WOLFFH. 1900a. 
Andrerseits erwäbnt KrABBE 1869, daß T. microps Dies. identisch ist 
mit 7. tumens MEHLIS. Die weitere Angabe, daß diese beiden Cestoden 
synonym mit Davainea urogalli, ist aber nicht zutreffend. 

6) Von CLERC als Drepanidotaenia beschrieben. 

7) Mit H. villosa (BuLocH) sollen synonym sein: T. otidıs WERNER 
1702, T. fimbriata Bartsch 1706, T. tardae GmELINn 1790 und Halysis 
villosa ZEDER. 

8) Wenige Tage vor dem Erscheinen der ÜCLERC’schen Arbeit er- 
schien die Arbeit von CHLODOKOVSKY, so daß MH. dentatus CLErc 1906a 
(FUHRMANN 1906c) synonym mit A. tetracis CuuLop. 1906 ist. 


74 OÖ. FuHrmann, 

Charadriiformes. 
Hımenolepis sphaerophora (Run.) 1809 
Hymenolepis interrupta (Run.) 1809'); FUHRMANN 1906c 
Hymenolepis longirostris (RunD.) 1809; KRABBE 1869 
Hymenolepis amphitricha (Run.) 1819; KrapßBE 1869; CuLErc 1903 
Hhmenolepis brachycephala (OREPLIN) 1829; KRABBE 1869; CoHn 1901 
Hymenolepis minuta (KRABBE) 1869 
Hymenolepis recurvirostrae (KRABBE) 1869 
Hymenolepis himantopodis (KRABBE) 1869, FUHRMANN 1906c 
Hymenolepis clandestina (KRABBE) 1869 ?); Corn 1904 
Hymenolepis uliginosa (KRABBE) 1882 
Hymenolepis hirsuta (KRABBE) 1882 
Hymenolepis (Echinocotyle) nitida (KRABBE) 1869; CLERC 1902, 1903 
Hymenolepis (Echinocotyle) nitidulans (KRABBE) 1882, OLERC 1903 
Hymenolepis (Echinocotyle) uralensis CLERC 1902, 1903 
Hymenolepis (Eehinocotyle) tenwis OLERC 1906a 
Hymenolepis spinosa v. LINSTOw 1906. 
Hymenolepis siyloides FUHRMANN 1906b 
Hymenolepis rectacantha FUHRMANN 1906b. 


Lariformes. 


? Hymenolepis microsoma (CREPLIN) 1829 (s. S. 8) 


Hymenoleprs 
Hhymenolepis 
Hymenolepis 


fusus (KRABBE) 1869 
vallei (StossicH) 1892a 
octacanthoides FUHRMANN 1906e?); CoHn 1901 (D,. octa- 


cantha KRABBE) 


Hymenolepis 


Hymenolepis 


baschkiriensis (CLERC) 1902, 1903. *) 


Columbiformes. 
sphenocephala (Run».) 1809), FUHRMANN 1906b 


1) Nach DiesinG 1850 ist T. interrupta RuD. synonym mit T. paradoxa 


RUD., was, 
richtig ist. 


wie unsere Untersuchung des Öriginalmaterials ergeben, nicht 


2) Conn 1904 gibt als Autornamen dieser Art OREPLIN an; der von 


ÜUREPLIN gegebene Name ist aber ein Museumsname, der nie publiziert 
wurde, und erst KRABBE hat diese Taenie unter diesem Namen beschrieben. 
3) Für den von CoHNn 1901 als Drepanidotaenia octacantha be- 
schriebenen Öestoden habe ich den Namen H. octacanthoides FUHRMANN 
1906c aufgestellt, da AM. octacantha KRABBE nur in Entenvögeln vorkommt. 

4) Synonym: Drepanidotaenia baschkiriensis CLERC 1903. 

5) Nach DıesinG 1850 ist mit obiger Taenie synonym T. serpenti- 
formis turteris GMELIN 1790, Alyselminthus columbae ZEDER 1800 und 
Halysis colımbae ZEDER 1803. Die ZEDER’sche Art ist vielleicht synonym 
mit Davarnea crassula RuD. 


Die Cestoden der Vögel. 70) 


Hymenolepis serrata FUHRMANN 1906b 
Hymenolepis armata FUHRMANN 1906b, 1906e 
Hymenolepis rugosus CLERC 1906a. 


Podieipediformis. 


Hymenolepis capillarıs (Rup.) 18091), KrABBE 1869; CoHn 1901 

Hıymenolepis multistriata (RuD.)”?) 1809, KrRABBE 1869, Conn 1901 

Hymenolepis rostellata (ABıuLpe.) 1793°); KrABBE 1869 (T. capitellata 
Rup.), FunrMmann 1895 und ConHn 1901 unter dem Namen T. capi- 
tellata RuD. beschrieben. 

Hymenolepis furcifera (KRABBE) 1869 *), Szymanskı 1905; Linstow 1908. 

Hymenolepis capillaroides FUHRMANN 1906b 

Hymenolepis podicipina SZYMANSKI 1905. 


Steganopodes. 


Hymenolepis medici (STOSSICH) 1890a, FUHRMANN 1906c. 


Cieoniiformes. 


Hhymenolepis microcephala (Ru».) 1819); KRABBE 1869, CoHun 1904 (MH. 
multiforımis CREPL.) 

Hymenolepis unilateralıs (Rup.) 18196), FUHRMANN 1906b (H. ardeae 
FUHRM.) 


1) Nach Dıesing 1850 sollen 7. minuta BRAUN, T. colymbi eristati 
Rup. 1809 und T. colymbi cornuti Rup. 1819 nichts anderes als T. 
capillarıs RupD. sein. Zwar sagt RupoupHı 1809 und 1819, daß die mit 
T. colymbi eristati RuD. bezeichneten Formen den beiden Taenien 7. multi- 
striata und T. macrorhyncha ähnlich seien. Weiteres Synonym: Dierano- 
taenia capillarıs (Run.) STOssicH 1898. 

2) Synonym: Dieranotaenia multistriata (RuD.) STOssicH 1898. 

3) Der älteste Name für die bisher immer als T. capitellata Run. be- 
zeichnete Taenie ist 7. rostellata« ABıupa. 1793 und Halysis. rostellata 
ZEDER 1803. Weiteres Synonym: Dilepis eapitellata Coun 1899a. 

4) Synonymie: Dilepis furcifera KRABBE, CoHNn 1899a. 

5) CoHun hat auf Grund der Untersuchung des Originalmaterials ge- 
zeigt, daß T. multiformis CREPLIN eine Hymenolepis-Art ist und nicht, 
wie bisher angenommen, eine Anomotaenia. Andrerseits hat unsere Unter- 
suchung des Öriginalmaterials von 7. micrpcephala Run. gezeigt, daß die- 
selbe identisch ist mit H. multiformis CREPLIN; ersterer Name als der 
ältere hat hinfort zu gelten. Der früher als T. multiformis bezeichnete 
und beschriebene Oestode (KRABBE 1869) ist wohl identisch mit Anomo- 
taenıa discoidea VAN BEN. Nach DiesinG 1850 soll auch T. unguwieula 
(BRAUN) mit obiger Taenia synonym sein, was mir nach Einsicht des sehr 
schlecht erhaltenen Originalmaterials nicht ganz sicher scheint. 

6) Unsere Untersuchung des Originalmaterials von T. unilateralis RuD. 
hat gezeigt, daß sie identisch ist mit unserer H. ardeae FUHRMANN 1906b 


76 O0. FuHRMAnNn, 


Hrymenolepis filirosiris (WEDL) 1856 
Hıymenolepis elongata FUHRMANN 1906b 
Hymenolepis breviannulata FUHRMANN 1906b 
Hymenolepis leptoptili (vw. Lıinstow) 1901. !) 


Phoenicopteri. 


Hymenolepis liguloides (GERVAIS) ?) 1847; CoHN 1901, FUHRMANN 1906c 
Hymenolepis caroli (PARONA) 1887a, FUHRMANN 1906c 
Hymenolepis megalorchis (LÜHE)?) 1898, CoHnn 1901. 


Anseriformes. 


Hymenolepis aequabilis (Ru».)*) 1869; KrAaBBE 1869, Stıues 1896, 
CLERC 1903 

Hymenolepis fasciata (Run».)?) 1809; KrABBE 1869, Stives 1896, CoHN 
1901, CLErc 1905 

Hymenolepis tenwirostris (Run».)®) 1369; KrABBE 1869, Stines 1896 

Hymenolepis setigera (FRÖLICH) ‘) 1789; KrABBE 1869, Srtıurs 1896; 
CLErc 1903 | 

Hymenolepis lanceolata (BLocH)°) 1782; KrABBE 1869; SrtinLEs 1896; 
WOLFFHÜGEL 1900a, Conn 1901, CLErRcC 1903 


(siehe auch 1906c), dieselbe also nicht der von KRABBE 1869 und ÜLERC 
1906b von dieser Taenie gegebenen Beschreibung entspricht [siehe Delepis 
campylaneristrota (WEDL)]. 

1) Diese Art wurde von v. Linstow als n. sp. inquir. kurz be- 
schrieben; sie ist, wie die Untersuchung des Originalmaterials (Museum 
Berlin) gezeigt, eine typische Hymenolepis-Art. In meiner Arbeit über 
die Hymenolepis-Arten 1906ec wurde die Art irrtümlich unter den Coracornithes 
aufgeführt. 

2) Synonymie: Halysis liguloides GERVAIS 1847; Dilepis liguloides 
(GERV.) CoHun 1899a. Nach Untersuchung der Originale ist auch Diorchis 
occhusa v. LINstow 1906a synonym mit obiger Art. 

3) Synonymie: Dilepis megalorchis LÜHE, CoHn 1899a. 

4) Synonymie: Dieranotaenia aequabilis RuD., STILES 1896. 

5) Synonymie: Alyselminthus crenatus ZEDER 1800 ex parte, Halysis 
crenata ZEDER 1803 ex parte, T. setigera FRÖLICH, V. FEUEREISEN 1868, 
Drepanidotaenia fasciala STILES 1896; Dilepis fasciata Coun 1899a. 

6) Synonymie: Drepanidotaenia tenwirostris Run., STILEsS 1896; Di- 
lepıs tenwirostris CoHn 1899a. 

7) Synonymie: T, fasciata RuD., v. FEUEREISEN 1868, Alyselminthus 
setigerus ZEDER 1800, Halysis setigera ZEDER 1803, Drepanidotaenia seti- 
gera STILES 1896; Dilepis setigera Coun 1899a. 

8) Mit H. lanceolata BLocH 1782 soll nach Diesing 1850 synonym 
sein T. anserum Frisch 1727, T. anseris BLoch 1779 und T. acutissima 
Parvas 1781. Wenn diese Synonyme wirklich richtig, so müßte obige 
Taenie H, anserum FRISCH heißen (die FriscH’sche Arbeit habe ich mir 


Die Cestoden der Vögel. 77 


Hymenolepis collaris (BarTschH)!) 1786; KraBBE 1869, Stives 1896 und 
CoHun 1901 als T. sinuora ZEDER beschrieben 

Hymenolepis microsoma (CREPLIN)?) 1829; KrasBBE 1869; CoHn 1901 

Hıymenolepis megalops (CREPLIN)?) 1829; Ransom 1902 

Hymenolepis micraneristrota (WEDL) 1856; KrABBE 1869 

Hiymenolepis coronula (Du3J.)t) 1845, KRABBE 1869, 1882; Stıves 1896; 
WOLFFHÜGEL 1900a, CoHn 1901. 

Hımenolepis gracilis (ZAEDER, KRABBE)?) 1869; StILEes 1896; CLERC 
1903, WOLFFHÜGEL 1900a; CoHn 1901 

Hymenolepis ereplini (KRABBE)®) 1869; Coun 1901 

Hıymenolepis amatina (KRABBE)‘) 1869; Schmipr 1894, StiLes 1896; 
CoHun 1901 

Hıymenolepis liophallos (KRABBE) 1869; 

Hymenolepis fragilis (KRABBE) 1869; FUHRMANN 1906c 

Hymenolepis groenlandica (KRABBE) 1869 

Hymenolepis fallax (KRABBE)°) 1869 

Hymenolepis octacantha (KRABBE)?) 1869; FUHRMANN 1906c 

Hymenolepis compressa (LInsTtow) 1892 

Hymenolepis pigmentata (v. Linstow) 1872b 


nicht verschaffen können). Sicher ist A. lanceolata BuocH 1782, synonym 
T. anseris BLOCH 1779, es wäre also vielleicht letzterer Name anzunehmen; 
ich tue dies nicht, weil zunächst noch zu entscheiden ist, ob nicht der 
FrıscH’sche Name zu gelten hat. Andere Synonyme sind: Halysis lancec- 
lata ZAEDER 1803, Drepanidotaenia lanceolata STILES 1896; Dilepis lanceo- 
lata Coun 1899a. 

1) Die allgemein als H. sinuosa ZEDER 1800 bezeichnete Art muß 
den ältern Namen /. collaris BatscH 1786 annehmen; synonym ist ferner 
T. eollari nigro BLocH 1779, T. torguata GMELIN 1790, Halysis torquata 
ZEDER 1803, Alyselminthus sinuosa ZEDER 1800, Halysis sinuosa ZEDER 
1803, Drepanidotaenia sinuosa STILES 1896, Dilepis sinuosa CoHN 1899a. 

2) Synonymie: Dilepis mierosoma CoHN 1899a. 

3) Hymenolepis megalops ist von CREPLIN und nicht von NITZSCH, 
wie allgemein angegeben, beschrieben worden. Nach DiesinG 1850 soll 
mit ihr synonym sein T. anatıs marilae CREPLIN 1825. 

4) Synonymie: Dicranotaenia coronula Stıuzs 1896. WOLFFHÜGEL 
1900a; ferner ist nach unserer Untersuchung des Originalmaterials mit 
dieser Art synonym A. megalhysiera v. Linstow 1905b. 

5) Synonymie: Halysis gracilis ZEDER 1803, Drepanidotaenia graeilis 
ZEDER, STILES 1896, WOLFFHÜGEL 1900a; Dilepis gracilis ZEDER, 
CoHn 1899a. 

6) Synonymie: Dicranotaenia creplini KRABBE, STOSSIcH 1898. 

7) Synonymie: Drepanidotaenia anatina KRABBE, STILES 1896, Dilepis 
anatina KRABBE, CoHN 1899a (s. S. 7). 

8) Synonymie: Lepidotrias fallae KRABBE, CoHN 1899a. 

9) Conx’s (1901) Beschreibung von Drepanidotaenia octacantha KRABBE 
bezieht sich auf eine andere Art, welche ich H. octacanthoides benannt habe. 


78 


Hymenolepis 


O0. FuHRMAnNN, 


tenerrima (v. Linstow)!) 1882 


Hymenolepis pachycephala (v. Lınstow) 1872b, 1904b 


Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepts 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepris 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hhymenolepis 
Hnymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hhymenolepis 


macracanthos (V. LINSTOW) 1877a 
abortiva v. Lıinstow 1904a 
trıfolium v. Linstow 1905 
sibirica (v. Linstow)?) 1905b 
retracta v. LINstow 1905b 
belateralis v. LInstow 1905b 
teresoides FUHRMANN 1906b 
simplex FUHRMANN 1906c 
papillata FUHRMANN 1906b 
flagellata« FUHRMANN 1906b 
bisaccata FUHRMANN 1906b 
longiewrrosa FUHRMANN 1906c 
longivaginata FUHRMANN 1906c 
orthacantha FUHRMANN 1906c 
lobata FUHRMANN 1906b 
tritesticulata FUHRMANN 1907a 
echinocotyle FUHRMANN 1907a 


Hymenolepis parvula Kowau. 1905 


Hhymenolepıs 

Hymenolepis 

Hhymenolepis 
1903. 


Hhymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 


arcuata KoWAL. 1905 
sagitta ROSSETER ?) 1906b 


(Echinocotyle) rosseteri (BLANCH.) 1891, STILES 1896, OLERC 


Coraciiformes. 


septarıa v. LINSTOW 1906 
brastliensis FUHRMANN 1906b 
caprımulgorum FUHRMANN 1906b, 1906c 


parvirostellata (v. Linstow) 1901 (als Drepantdotaenia be- 


schrieben). 


Coceygiformes. 


Hymenolepis intermedius CuLERC 1906a. 


1) Hymenolepis tenerrima VON LINST. scheint uns ähnlich zu sein der 
H. nitida KRABBE 1869, und es gehört diese Art also vielleicht ins Sub- 
genus Echinocotyle. 

2) Diese Art wurde von OÖ. v. Lınstow als Diorchis beschrieben, 
sie ist aber, wie unsere Untersuchung der Originale gezeigt, eine Hymenolepis. 

3) RossETER 1906b beschreibt unter dem Namen Drepanidotaenia 
sagitta eine Taenie mit einem Hoden, welche aber, nach der Hakenform 
zu schließen, wohl eine //ymenolepis-Art mit 3 Hoden ist. 


Die Cestoden der Vögel. 9 


Passeriformes. 


Hymenolepis stylosa (Rup.) 18091); KraBBE 1869, Vorz 1900, CLERC 
1903 

Hymenolepis fringillarum (Run.)?) 1809; KrABBE 1869 

Hymenolepis naja (Dus.) 1845, v. Lınstow 1872b 

Hymenolepis serpentulus (SCHRANK) ”) 1788; KrABBE 1869 (T. serpentulus 
und T. angulata), 1882; v. Lisstow 1893a, VoLz 1900, CoHN 
1901, CLerc 1903 

Hymenolepis farciminosa GOEZE *) 1782; KrABBE 1869 (T. farciminalis), 
Vorz 1900 (Diplocanthus farciminalis BATSCH) 


1) Synonymie: T. serpentiformis GOEZE 1782 ex parte, Halysis 
glandarii ZEDER 1803, Diplacanthus stylosus Run., Vorz 1900. 

2) Fragliche Synonyme: T. avium PALLAS ex parte 1781, T. passerıs 
GMELIN 1790 und Halysis passeris ZEDER 1803. Hymenolepis leptodera 
v. Linstow 1879b aus Astur nisus stammend, scheint, wie schon VOLZ 
1900 bemerkt, eine mit einem der Passeres verschlungene H. fringillarum 
Rup. zu sein. In einer Arbeit v. Linstow’s 1904b wird obige Taenie 
als Aploparaksis fringillarum beschrieben, was wohl ein Irrtum ist. 

3) Nach DiıesingG 1850 sind synonym mit H. serpentulus (SCHRANK) 
folgende Artnamen: T. corvi frugilegi VıBoRG 1795, T. corw cornieis 
GMELIN 1790, T. corvorum Run. 1819 (p. 171), T. serpentiformis eollaris 
GOEZE 1782 ex parte, T. undula SCHRANK 1788 ex parte. Die des 
weitern angeführten Synonyme T. pusilla GOEZE ex parte und T. orioli 
galbuli Run. gehören nicht hierher. Es wären nun hier anzufügen die 
von DIESING zusammengestellten Synonyme von T. angulata Ru»., da 
dieselben nichts anderes zu sein scheinen als 7. serpentulus aus den Turdus- 
Arten. Es sind dies: T. tenuis nodis instructa BrLocHh 1782, T. nodosa 
SCHRANK 1788; T. maculata Bartsch 1786, T. serpentiformis BATSCH 
ex parte 1786, Halysis turdorum ZEDER 1803. Ob alle diese Synonyme 
wirklich zu MH. serpentulus gehören, ist fraglich und nicht mehr mit Sicher- 
heit festzustellen. Als weiteres Synonym kommt hinzu 7. undulata RuD., 
wie sie DUJARDIN auffaßt, während seine T. angulata Run. die wirkliche 
Dilepis undulata Ru»., d. h. D. undula SCHRANK, ist. Bei ZEDER sollen 
nach DiEsinG Halysis cornieis, galbulae und glandorii ZEDER 1803 sowie 
Alyselminthus serpentulus ZEDER 1800 und Halysıs serpentulus ZEDER 
1803 ebenfalls obiger Art synonym sein. Weitere Synonyme: Hymeno- 
lepis angulata RuD., StossicH 1898, Diplacanthus serpentulus VoLz 1900, 
T. constricta MORELL 1895. Die von KrABBE 1869 als T. angulata RuD. 
bezeichnete Taenie ist nach Conn 1901 identisch mit FH. serpentulus. 

4) Statt T. farciminalis (BaTscH 1786) ist der Name H. fareiminosa 
GOEZE anzuwenden. GOEZE und BATSCH sprechen bei dieser Taenie von 
hinten langen und wurstförmigen Gliedern, so daß es mir scheint, daß die 
von KRABBE und VoLz beschriebene Taenie nicht die eigentliche H. farci- 
minosa ist. Die GOEZE’sche Art hat hingegen einige Ähnlichkeit mit 
Monopylidium musculosum FUHRMANN, sicher ist dies aber nicht zu sagen. 
Nach DieEsinG soll auch T. sturni GMELIN 1790 hierher gehören. Weitere 


s0 O0. FuHRMmAnN, 


Hhymenolepis bilharzii (KRABBE) 1869 
Hımenolepis petrocinclae (KRABBE) 1882 
Hymenolepis orientalis (KRABBE) 1882 
Hhymenolepis hemignathi SHIPLEY 1898 
Hymenolepis polygramma (v. Linstow) 1875 
Hymenolepis dahmica (v. Linstow) 1903 
Hymenolepis pellucida FURRMANN 1906b 
Hrymenolepis miecroscolecina FUHRMANN !) 1906b (H. uncinata FUHRM.), 
1906e (H. mieroscoleeina) 
Hymenolepis brevis FUHRMANN 1906c 
Hymenolepis passerina FUHRMANN 1907a 
Hhymenolepis parina FUHRMANN 1907a 
Hymenolepis interruptus CLERC 1906a ?) 
Hymenolepis trichodroma WOLFFHÜGEL 1900a 


Untergatt. Echinocotyle BLANCHARD 1891a. 


Hymenolepis-Arten mit 10 Haken am Rostellum. 
Die Saugnäpfe groß mit feinen Häkchen am Rande 
undin der Mitte. Immer ein Sacculus accessorius. 


Typische Art: Esch. rosseteri BLANCHARD 1891la. 


Diese Cestoden-Gruppe wurde von BLAncHARD als Genus auf- 
gefaßt und auf Grund des Baues des Scolex charakterisiert ohne 
jegliche Kenntnis der Anatomie, deren Untersuchung ÜCtLErc 1905 
gezeigt hat, dab wir es mit typischen Aymenolepis-Arten zu tun 
haben. Er faßt deshalb diese Gruppe als Untergattung auf. Ich 
wäre geneigt, dieselbe ganz zu streichen, da wir auch bei andern 
Hymenolepis-Arten im Larvenzustande, in der Jugend oder sogar bei 
vollkommen geschlechtsreifen Formen (Hym. earioca MaG., Hym. echino- 
cotyle FUHRMANN) bewaffnete Saugnäpfe antreffen (s. FuHrmann 1906e). 
Ich führe hier nochmals die Arten des Subgenus Echinotyle auf, sie 
finden sich aber ebenfalls in der Liste der Hymenolepis-Arten. 


Synonyme: Diplacanthus fareiminalis VoLz 1900 und T. undulata DUJARDIN 
(nach VouLz 1900). 

1) Dieser Cestode wurde von mir (1906b) unter dem Namen MH. 
uneinata FUHRMANN beschrieben. Der Name ist aber bereits für eine 
Säugetier-FHymenolepis-Art vergeben. Ich habe deshalb 1906ce den Namen 
IH. mueroscolecina vorgeschlagen. 

2) Dieser Artname ist bereits von RUDOLPHI vergeben, er muß also 
durch einen andern ersetzt werden. 


Die Cestoden der Vögel. s1 


Charadriiformes. 


Hymenolepis (Echinocotyle) uralensis CLERC 1902, 1903 

Hymenolepis (Echinocotyle) mitida (KRABBE) 1869; CLEerc 1902, 1905 
Hımenolepis (Echinocotyle) nitidulans (KRABBE) 1882 

Hymenolepis (Eehinoecotyle) tenwis CLERC 1906a. 


Anseriformes. 
Hymenolepis (Echinoeotyle) rosseteri R. BLANCH. 1891la, Stines 1896. 


Gatt. Diorchis ULerc 1903. 


Rostellum mit einfachem Hakenkranz. Hakenzahl 
gering (10. Innere Längsmuskelschicht aus 8 Bündeln 
bestehend. Genitalporieinseitig. ZweiHoden. Uterus 
sackförmig. In Vögeln. 


Typische Art: Diorchis acuminata UCuerc 1902. 


Ralliformes. 


Diorchis inflata (Ru».) 1809), KRABBE 1869, Jacosı 1898, CLERC 1903, 
Linstow 1906a 
? Diorchis acuminata CLERC 1903. ?) 


Anseriformes. 


Diorchis acuminata CLERC 1903, CLERC 1902 (Drepanidotaenia acuminata) 
Diorchis parviceps (von Linstow)?) 1872b, 1904b. 


1) Diese Art wurde allgemein als 7. inflata bezeichnet, doch ist der 
älteste Name T. fulicae Rup., der aber nicht als guter Artname zu gelten 
hat. Sie wurde von CoHn (1901) und v. Lıinstow (1906a) mit Un- 
recht als Drepanidotaenia-, d. h. Hymenolepis-Art angesehen. T. inflata 
Rup., WEpL 1856 ist wohl eine andere Art derselben Subfamilie. KRABBE 
glaubt, daß sie vielleicht identisch sei mit 7. spiculigera (NITZSCH) GIEBEL, 
während mir letztere Art eher mit der wirklichen D. inflata Ru». identisch 
scheint, und zwar wegen der Angabe GIEBEL’s, daß der Cirrus an seiner 
Basis knotig angeschwollen ist, wie dies regelmäßig für D. inflata Ru». 
zutrifft. Weitere Synonyme: Dilepis inflata (Rup».) Coun 1899a, Dre- 
panidotaenia inflata (Rup.) PARONA 1899, Hymenolepis inflata Com 1900. 

2) Diorchis acuminata CLERC wurde zuerst als Drepanidotaenia be- 
schrieben; sie soll, was wohl ein Irrtum, auch in Ralliformes (Fulica atra) 
vorkommen (s. S. 7). 

3) Synonymie: Fuymenolepis parviceps (VON LINST.) FUHRMANN 1906b. 

Zool. Jahrb., Supplement X. 6 


82 O. Fuurmans, 


Gatt. Aploparaksis Cverc 1803. 
Synonym: Monorchis CLERC 1902, Skorikowia v. LINsTtow 1905b. 


Cestoden mit Rostellum, das eineneinfachen Kranz 
von Haken trägt. Genitalpori einseitig. Ein Hoden. 
Große Vesicula seminalis externa. Uterus sackförmiege. 
In Vögeln. 


Typische Art: Aploparaksis filum (GOEZE 1902). 


Dieses Genus wurde zuerst von ÜLerc 1902 mit dem Namen 
Monorchis benannt, da derselbe aber bereits an eine Trematoden- 
genus vergeben, so mußte der Name geändert werden. Die hierher 
gehörenden Arten stammen zum Teil aus den Genera Diplacanthus 
WEINLAND, Drepanidotaenia RAILLET und dem alten Genus Taenia. 

Die mit zwei Hoden beschriebene Skorikowia clausa v. LINSTOwW 
1905b ist, wie unsre Untersuchung der Originale gezeigt, eine typische 
Aploparaksis und zwar A. brachyphallos KRABBE, so daß also das neue 
Genus Skorikowia fällt! 


Charadriiformes. 
Aploparaksis filum (GOEZE)!) 1782; KrasBE 1869, CLerc 1902, 1903 
Aploparaksis filum var. pseudofilum CLERrc?) 1903, 1902 
Aploparaksis crassirostris (KRABBE)?) 1869; CLErc 1902, 1903 
Aploparaksis hirsuta (KRABBE) 1882 %), CLerc 1902, 1903 


1) LÖNNBERG 1896 beschreibt aus einem Raubvogel (Poiyborus 
thoarus) eine Taenia filum var. polybori LÖNNBERG, welche, wie unsere 
Untersuchung gezeigt, nichts anderes ist als junge Exemplare einer von 
dem betreffenden Raubvogel mit seiner Beute gefressenen Aplop. filum. 
Lınton 1892 gibt diesen Oestoden aus Larus californicus an, doch ist aus 
seiner rein äußerlichen Beschreibung nicht zu ersehen, ob dies wirklich 
zutreffend, und mir scheint seine 7. filum identisch zu sein mit der in 
Möven vorkommenden Hymenolepis fusus (KRABBE). 4Apl. filum ist ein 
typischer Öestode der Anseriformes. Synonymie: Halysıs filum ZEDER 
1803, Diplacanthus filum Vouz 1896; Hymenolepis filum PARONA 1899a, 
CoHn 1901; Monopylidium filum PARoONXA 1902; Monorchis filum CLERC 
1902. 

2) Synonymie: Monorchis pseudofilum CLERC 1902. 

3) Synonymie: Dieranotaenia crassirostris STOSSICH 1898, Monorchis 
crassirostris CLERC 1902. 

4) Synonymie: Monorchis hirsuta OLERC 1902. 


Die Cestoden der Vögel. 83 


Aploparaksis brachyphallos (KRABBE) 1869), 1882 
Aploparaksis penetrans CLERC ?) 1902, 1903 
Aploparaksis diminuens VON LInsTow 1905b. 


Lariformes. 
Aploparaksis cirrosa (KRABBE)°?) 1869; CLERC 1902, 1903. 


Anseriformes. 


Aploparaksis furcigera (Ru».) 1819*), KrapBE 1869 (T. rhomboidea), 
StiLes 1896 Dieranotaenia fureigera RunD., von Linstow 1905a 
(T. rhomboidea) 

Aploparaksis birulai von LIssTtow 1905b. 


Passeriformes. 


Aploparaksis dujardini (KRABBE) 1869, FUHRMANN 1895, CLERC 1902, 
1903. 


7. Fam. Taenidae PERR. 


Meist große Arten, deren reife Glieder länger als 
breit sind. Scolex mit Rostellum und meist mit dop- 
peltem Hakenkranz, selten rudimentär. Genitalpori 
unregelmäßig alternierend; zahlreiche Hoden in den 
Seitenteilen des Mittelfeldes Uterus mit Median- 
stamm undspäterauftretenden Seitenästen. In Säuge- 
tieren und Vögeln. 


1) Synonymie: Aymenolepis brachyphallos (KRABBE) FUHRMANN 1906b, 
Auf Grund der Untersuchung des Originalmaterials ist zu obiger Art eben- 
falls synonym Skorikowia elausa v. LINSTOW 1905b und Diorchis serpen- 
tata v. Linstow 1905b. 

2) Synonymie: Monorchis penetrans CLERC 1902. 

3) Synonymie: Monorchis cirrosa CLERC 1902. 

4) Diese Art ist synonym mit T. rhomboidea DUJARDIN 1855, welche 
nach Untersuchungen von KRABBE wahrscheinlich synonym ist mit T. trilineata 
BATSCH sowie mit T. lineata BLOCH (s. STILES 1896, p. 34) und mit 
T. longirostris FRÖLICH, vielleicht auch mit T. conica MoLın. In der 
CREPLIN’schen Sammlung finden sich unter dem Namen T. trilineata 
BATscH mindestens 2 Arten, von welchen die eine 4. fureigera RuD., 
die andere unbestimmbar. DUJARDIN glaubt, daß T. lineata, T. trihneata 
und T. longirostris nur eine Varietät von T. sinuosa ist, was wohl kaum 
zutreffend. Weitere Synonyme: Dieranotaenia fureigera STILEsS 1896, 
Aploparaksis rhomboidea v. List. 1905a. 

6* 


84 O. Funrnass, 


Gatt. Taenia LinneE. 


Scolex mit rudimentärem Rostellum oder Rostellum 
mit zwei Hakenkränzen. Genitalpori unregelmäßig 
abwechselnd. Hoden zahlreich vor den am Hinterrand 
der Proglottis gelegenen weiblichen Genitaldrüsen. 
Uterus ein medianer Kanal, von dem seitlich rechts 
undlinkszahlreicheAbzweigungenabgehen. In Säuge- 
tieren und Vögeln. 


Typische Art: Taenia solium LinN&£. 


Dieses bei Säugetieren sehr verbreitete Genus hat bei Vögeln 
nur wenige Vertreter. 


Lariformes. 


Taenia diaphana FUHRMANN 1908b. 


Aptenodytiformes. 


Taenia diaphoracantha FUHRMANN 1908b. 


Anseriformes. 


Taenia brachysoma SETTI 1899a 
Taenia krabbei Kow. 1895, STILES 1896. 


Aceipitres. 
Taenia eylindracea BLocH 1782), VoLz 1900, T. globifera und T. armi- 


gera, COHN 1901 (Cladotaenia globifera) 
Taenia heteracantha FUHRMANN 1906a. 


CoHx hat für diese Art das Genus Cladotaenia aufgestellt, 
welches aber nicht aufrecht erhalten werden kann, wenn wir nicht 
die zweite von ihm in dasselbe gestellte Art 7. dentritica aus dem 
Eichhörnchen als neue typische Art des Genus aufstellen wollen. 
Für letztere ist das Genus Catenotaenia Janıckı 1904 geeründet 
worden. 


1) Nach den Nomenklaturregeln muß diese jetzt allgemein T. globifera 
Bartsch 1786 genannte Art T. cylindracea BuLocH 1782 genannt werden. 
Andere Synonyme dieser Art sind 7uenia brachium globulosum GOEZE 
1782, T. globulosa SCHRANK 1788, T. erenulata SCHULTZE 1825 und 
Halysis globifera ZEDER 1805. ÜCLErc 1903 hat ferner gezeigt, daß 
Taenia armigera VOLz (1900) identisch ist mit T. globifera d.h. T. eylindracea. 


Die Cestoden der Vögel. 1695) 


Zwischengruppe. 


Gatt. Diploposthe Jacosı 1896. 


Rostellum mit einem einfachen Kranz von 10 Haken 
bewaffnet. Genitalpori doppelt, ebenso Cirrusbeutel 
and Vapina Geschlechtsdrüsen einfach Wenige 
Hoden, ein Keimstock, ein Dotterstock und ein Uterus. 
In Vögeln. 


Typische Art: Diploposthe laevis (BLoch) 1782. 


Anseriformes. 


Diploposthe laevis (BLocH)!) 1782, KrapBE 1869, 1882, Jacosı 1897, 
CoHrn 1901, KOWALEVSKI 1903, FUHRMANN 1905b 
Diploposthe tubercolata (KREFFT)?) 1873. 


Fam.: Acoleinidae FUHRMANN. 


Cestoden mit dicker Stobila und kurzen Gliedern. 
Scolex sehr verschieden gestaltet. Die Muskulatur 
des Parenchyms besteht aus mindestens zwei Längs- 
muskelzonen, mit welchen Lagen von Transversal- 
fasern alternieren. Cirrus einfach oder doppelt, sehr 
eroß und stark bewaffnet. Weibliche Genitalöffnung 
fehlt. In Vögeln. 


Gatt. Acoleus FUHRMANN 1899e. 


Weibliche und männliche Geschlechtsorgane ein- 
fach. Cirrusbeutel regelmäßig abwechselnd links und 
rechts ausmündend. Receptaculum seminis sehr groß. 
In Vögeln. 


Typische Art: Acoleus vaginatus (Rup. 1819). 
Syn.: Acoleus armatus FUHRMANN 1899e u. d. 


1) Mit D. laevis sind synonym, wie unsere Untersuchung des Original- 
materials gezeigt hat, T. bifaria v. SIEBOLD 1848 (MonTIcELLı 1897), 
D. lata FUHRMANN 1900a und Diploposthe swigeneris Kow. 1903. Taenia 
trichosoma v. LINSTOW 1882, ein junger Cestode ohne Spur von Geschlechts- 
organen, scheint uns ebenfalls identisch zu sein mit D. laevis (BLANCH.). — 
Weitere Synonyme: Halysis laevis ZEDER 1883, Cotugnia bifaria v. SIEBOLD 
(STILES 1890). 

2) Diploposthe tubercolata KREFFT ist nicht, wie BLAncHArD 1891a 
meint, eine Ophryocotyle, sondern wohl sicher eine Diploposthe. 


86 O0. FUHRMANnN, 


Ralliformes. 


Aecoleus longispieulus (STossicH) !) 1895. 


Charadriformes. 


Aecoleus vaginatus (Runp.) 1809°), FUHRMANN 1899c (Acoleus armatus 
FUHRMANN) 1899d, 1900b 
Acoleus erassus FUHRMANN 1900b. 


Gatt. G@yrocoelia FUHRMANN 1899c. 
Syn.: Brochocephalus v. Linstow 1906a. 


Rostellum bewaffnet mit einer Reihe von Haken, 
welche in achtfach gebrochener Zickzacklinie ange- 
ordnet. Weibliche und männliche Geschlechtsorgane 
einfach. Cirrusbeutel mündet unregelmäßig ab- 
wechselnd. Receptaculum seminis klein, Uterus ring- 
förmig oval mit zahlreichen Ausstülpungen. In der 
Medianlinie am Hinterrande der Proglottis findet 
sich in ganz reifen Gliedern eine dorsale und ventrale 
Uterusöffnung. In Vögeln. 


Typische Art. Gyrocoelia perverse FUHRMANN 189%kc. 


Trotz der verschiedenen Beschreibung ist nach unserer Unter- 
suchung des Originalmateriales Brochocephalus v. Lıxstow 1906a 
synonym mit Gyrocoelia. 


Charadriiformes. 


Gyrocoelia perverse FUHRMANN 1899c, 1899d 
Gyrocoelia leuce FUHRMANN 1900a, 1900b 

1) LÜHE gibt in einem Referat über Arıora’s Revision der Bothrio- 
cephaliden an, daß die Bothriotaenia longispieula (SToss.) eine Acoleus-Art 
sei (in: Otrbl. Bakteriol., Vol. 29, 1901). 

2) Diese Art wurde von mir als A. armatus FUHRMANN beschrieben ; 
die Untersuchung des Originalmaterials der Rupoupur’schen Sammlung 
zeigte dann, daß dieselbe identisch ist mit T. vaginatus (RuD.). Nach 
DiEsinG 1850 muß als synonym zu obiger Art betrachtet werden: Halysıs 
charadrii ZEDER 1803, T. charadrii himantopodis Rosa 1794, T. himanto- 
podis melanopteri NITZSCH. Die übrigen noch als synonym erwähnten 
Arten sind es sicher nicht; auch für die erwähnten ist die Identität nicht 
sicher. 


Die Cestoden der Vögel. 87 


Gyrocoelia brevis FUHRMANN 1900b 
Gyrocoelia paradoxa (v. Linstow) 1906a.!) 


Gatt.: Diplophallus FUHRMAnN 19006. 


Männliche Geschlechtsorgane doppelt, weibliche 
Geschlechtsorgane einfach. Receptaculum seminis 
groß und doppelt. In Vögeln. 


Typische Art. Diplophallus polymorphus (Ru».) 1819. 


Charadriiformes. 


Diplophallus polymorphus (Run.) 1819 ?), KrasBBE 1869, WOLFFHÜGEL 
1898a, 1900a, FUHRMANN 1900b, CoHun 1900d. 


Gatt.: Shipleya FUHRMANnN 1907. 


Scolex ohne Rostellum mit scheitelständigen Pa- 
pillen. Männliche Genitalporen regelmäßig ab- 
wechselnd. Penis von konischer Form und bewaffnet 
mit großen Haken. Der Dotterstock liegt dorsal vom 
Keimstock. Vonder Vagina persistiert nur einzentral 
gelegenes kleines Receptaculum seminis Uterus 
anfangs ringförmig, später stark verzweigt. 

Typische Art: Shipleya inermis FUHRMANN 1907b. 


Charadriformes. 


Shipleya inermis FUHRMANN 19085. 


Gatt. Dioicocestus FUHRMANN 1900a. 


Getrenntgeschlechtliche Cestoden Weibchen 
dicker und breiter als das Männchen. Die männlichen 
Geschlechtsorgane sind doppelt. Die weiblichen Ge- 
schlechtsorgane sind einfach, die blindendigende Va- 
gina unregelmäßig abwechselnd links oderrechts dem 
Strobilarande sich nähernd. In Vögeln. 


Typische Art: Dioicocestus paronai FUHRMANN 1900a. 


1) Synonym Brochocephalus paradoxus v. LINSTOW; ganz verfehlte 


Beschreibung. 
2) Synonym: Gyrocotyle polymorpha KRABBE (PARONA) 1902. 


38 O0. FUHRMANN, 


Ciconiiformes. 


Dioicocestus paronai FUHRMANN 1900a, 1900b. 


Podieipediformes. 


Dioicocestus aspera (MEHLIS) 1831), FUHRMANN 1900b 
Dioieocestus acotylus FUHRMANN 1904a u. 1904b 
Dioicocestus (?) novae hollandiae KREFFT 1873.°) 


9. Fam.: Amabilinidae FUHRMANN. 


Taenien mit eigentümlich gestalteten Anhängen 
an den Proglottiden. Die Vagina fehlt und ist durch 
eine akzessorische seitlich, ventral oder dorsal ge- 
legene weibliche Geschlechtsöffnung ersetzt. 


Gatt. Amabilia DiamarE 1897a. 
Synonym: Aphanobothrium v. LINSTOW 1906a. 


Scolex sehr klein, bewaffnet mit einem haken- 
tragendenRostellum. MännlicheGeschlechtsöffnungen 
doppelt. Cirrus stark bewaffnet. Weibliche Ge- 
schlechtsdrüsen einfach. Vagina ventral ausmündend, 
in einen median ausmündenden Kanal des Excretions- 
systems sich eröffnend (?). Uterus eindorsoventralge- 
stellter Ring mit dorsoventralen Anastomosen. Onco- 
sphäre sphärisch, Hüllen spindelförmig. In Vögeln. 


Typische Art: Amabilia lamelligera (ÖwEn 1835). 


Trotz der vollkommenen verschiedenen Beschreibung von seiten 
von v. Lınstow (1906a) ist Aphanobothrium catenatum v. LinsT., wie 
unsere Untersuchung des Originalmateriales gezeigt, identisch mit 
4. lamelligera Owen! 


Phoenicopteri. 
Amabrilia lamelligera OwEN 1835 ?); DIAMARE 1897a, CoHn 1898, 1900d. 


1) D. aspera (MEHLIS) ist sehr oft, so auch von RUDOLPHI, KRABBE 
und andern, als T. lanceolata bestimmt worden. 

2) Nach den Angaben von KREFFT 1873 zu urteilen und auf Grund 
des Wohnortes des Parasiten schließe ich, daß diese Species eine Dioicocestus- 
Art ist. 

3) Synonym: Aphanobothrium eatenatum v. List. 1906a. 


Die Cestoden der Vögel. 89 


Gatt. Schistotaenia CoHux 1900d. 


Scolex mit einem sehr großen mit Haken bewaft- 
neten Rostellum. Die Glieder tragen seitliche An- 
hänge. Männliche Geschlechtsöffnungen sind lateral 
und unregelmäßig abwechselnd. Vagina fehlt. Weib- 
liche Genitalöffnung ersetzt durch eine median dorsal 
und ventral ausmündende akzessorische Vagina. In 
Vögeln. 


Typische Art: Schistotaenia macrorhymcha (Run. 1819), Conn 19004. 


Podiecipediformes. 


Schistotaenia macrorhyncha Rup. 1819), KrABBE 1869, Comn 1900d, 
CLerc 1907. 


Gatt.: Tatria KOowALEewsKı 1904b. 


Kleine Taenien mit Scolex, dessen Rostelum mit 
einem Hakenkranz bewaffnet. Die wenigen Glieder 
besitzen seitliche Anhänge. Männliche Genitalporen 
regelmäßigabwechselnd. Großer Cirrusbeutel, wenige 
Hoden. Keineder Vaginalöffnungentsprechende weib- 
liche Geschlechtsöffnung. Die Vagina geht von einer 
Proglottis in die andere und vereinigt so die Recepta- 
cula seminis, welche in der Mitte der Strobila ge- 
legen. Es besteht als Ersatz eine akzessorische »Va- 
gina, welche auf der entgegengesetzten Seite der 
Penisöffnung liegt und oft am Proglottidenrande aus- 
mündet. In Vögeln. 


Typische Art: Tatria biremis Kow. 1904b. 


Dieses interessante Genus ist von KowALEwsKI begründet und 
genau beschrieben worden. Die eingehende Untersuchung einer 


1) Diese Art ist, wie unsere Untersuchung des Öriginalmaterials 
ergeben, identisch mit Sch. scolopendra DIES., während sie CoHn 19004 
als besondere Art betrachtet und beschreibt. 

Weitere Synonyme: T. scolopendra DiEsinG 1850, Drepanidotaenia 
macroryncha RuD. PARONA 1899, Amabilia maerorhyncha RuD. PARONA 
1902. 

v. Lınstow (1908) setzt diese Art mit Unrecht in das Genus Thtria 
(Tatria scolopendra DIES., Linstow 1908). 


90 O0. FuHrmann, 


zweiten Art durch MrAzEx 1905 hat einige neue eigentümliche 
anatomische Tatsachen zutage gefördert, welche ich in der KowA- 
tLEwsKTschen Genusdiagnose eingefügt habe. 


Podieipediformes. 


Tatria acanthorhyncha WEDL !) 1856, KrABBE 1869, MRAZER 1905 
Tatria biremis Kow. 1904b 
Tatria appendiculata FUHRMANN 1907b. 


10. Fam. Fimbriariidae WOLFFHÜGEL, 


Cestoden mit kleinem leicht abfallendem Scolex, 
der durch einen vom vorderen Teil der Strobila ge- 
bildeten sehr großen Pseudoscolexersetzt wird. Innere 
und äußere Segmentation der Strobilafehlt. Genital- 
pori einseitig. Mehrere männliche und weibliche Ge- 
schlechtsgänge münden ohne Ordnung dicht gedrängt 
am Strobilarande aus. In Vögeln. 


Gatt.: Fimbriaria Froruich 1802. 
Synonyme: Epision Linton 1892, Notobothrium v. LInstow 1905b. 


Scolex fällt leicht ab und ist ersetzt durch einen 
hammerförmigen Pseudoscolex Äußere und innere 
Segmentation der Strobila fehlt. Genitalpori ein- 
seitig. Mehrere männliche und weibliche Genital- 
gänge münden ohne Ordnung untereinander am Strobi- 
larande aus. Uterus löst sich in eine große Zahl von 
Eischläuchen auf. In Vögeln. 


Typische Art: Fimbriaria fasciolarıs (PALLAs 1781). 


Dieses Genus wurde von WOLFFHÜGEL 1900a einer sehr ein- 
gehenden Untersuchung unterzogen. v. Linstow 1905b hat unter dem 
(Grenusnamen Notobothrium als neues Bothriocephaliden - Genus (!!) 


1) Nach KrABBE 1869 soll diese Art vielleicht identisch sein mit 
T. scolopendra DIES., was nicht zutreffend, da letztere mit 7. macrorhyncha 
Ru». identisch und eine Schistotaenia ist. CoHN 1900 sagt, daß dieser 
Cestode, den er bereits früher als unsichere Art des Genus Amoebotaenia 
aufgezählt, nach seiner Untersuchung eine sichere Art dieses Grenus sei, 
was aber, wie MRAZEK gezeigt, vollkommen unzutreffend ist. LINSTOW 
1908 sagt irrtümlich, daß MRAZEK diese Art als Schästotaenia beschrieben. 


Die Cestoden der Vögel. 91 


einen Cestoden, N. arctium v. Lınstow, beschrieben, der, wie unsere 
Untersuchung des Originalmaterials gezeigt hat, absolut identisch ist 
mit Fimbriaria fasciolaris! Der Pseudoscolex dieses Öestoden ist so 
gefaltet, daß er bei oberflächlichem Zusehen zwei Bothrien vortäuscht. 
Früher hat bereits Lıvtoxv ein besonderes Genus Zpision für die- 
selbe Art geschaffen. 


Anseriformes. 


Fimbriaria faseiolaris (PauLas)!) 1781, KraBBE 1869 (Taenia malleus), 
WOLFFHÜGEL 1898, 1900a 
Fimbriaria plana v. LINSTOw 1905a. 


Ungenügend bekannte Genera. 


Gatt.: Copesoma SINITZInE 1896. 


Seolex mit einem mächtigen Rostellum. Genital- 
porı auf einer Papille ausmündend. In den jungen 
Proglottiden sind die unregelmäßig abwechselnden 
Genitalporen ventral, in den reifen Gliedern lateral 
gelegen. In Vögeln. 


Typische Art: Copesoma papillosum SINITZINE. 


Dieses Genus ist durchaus ungenügend charakterisiert auf Grund 
von sehr schlecht erhaltenen Material. Die typische Art aus Tringa 
minuta stammend ist wohl identisch mit einer der zahlreichen aus 
diesem Vogel bekannten Cestoden. 


Charadriiformes. 
Copesoma papillosum SINITZINE 1896. 


Tetracisdicotyla FUHRMANN 1907a. 


Scolex ohne Rostellum mit 4 großen Saugnäpfen, 
welche ein eigentümliches Muskelorgan enthalten. 
Strobilation undeutlich. Geschlechtsorgane unregel- 
mäßig abwechselnd. Cirrusbeutel groß, Hoden zahl- 
teich. In Vögeln. 


Typische Art: Tetracisdieotyla macroscolecina FUHRMANN. 


1) Hierzu ist synonym: T. malleus GoEZE 1782, Alyselminthus malleus 
ZEDER 1800, Halysis malleus ZEDER 1803, Fimbriaria malleus FROELICH 
1802, Fimbriaria mitra FRÖLICH 1802, Taenia pediformis KREFFT (?), 
Epision plicatus Linton 1892, Notobothrium arcticum v. Lixstow 1905b. 


99 O0. FuHRrMAnN, 


Cieoniiformes. 
Tetracisdicotyla macroscolecina FUHRMANN 1907a. 


Ungenügend bekannte Arten von Vogeltaenien. 


Es sollen in den nachfolgenden Specieslisten alle diejenigen 
Arten angeführt werden, welche zu ungenügend bekannt sind, um 
in ein bestimmtes Genus eingereiht werden zu können. Von den 
meisten derselben waren die Typen nicht erhältlich oder sind die- 
selben nicht mehr vorhanden. In den Fußnoten sind eine größere 
Zahl von Arten angeführt, welche ich zu streichen vorschlage. Es 
sind dies alles alte Arten, von welchen die Typen nicht mehr exi- 
stieren und welche so mangelhaft beschrieben, dab ein Erkennen 
nicht mehr möglich ist. Ich glaube, daß der Zeitpunkt gekommen, 
diesen unnützen Ballast endlich definitiv zu entfernen. 


Apterygiformes. 
Taenia apterycis CHATIN 1885. 


Galliformes. 


Taenia echinata Ousson 1893!) 
Taenia odiosa LEIDY 1887/1904 
Tetrathyridium perdieis saxatilis Rup. 1819.?) 


Ralliformes. ?) 
Taenia gallinula VAN BEN. 1858. 


1) Diese Art ist vielleicht eine Davainea. 

2) Diese jungen geschlechtslosen Würmer scheinen nach Größe des 
Kopfes und Fehlen eines Rostellum Rhabdometra tomica CHOLODK. oder 
Eh. nigropunctata CRETY anzugehören. 

3) Zu streichende Arten: Taenia ralli Rup. 1809 (aus Crex 
crex) (Halysis ralli ZEDER 1803). Der Typus dieser Art existiert nicht 
mehr, sie ist vielleicht identisch mit Anomotaenia pyriformis WEDL, 
doch ist die Identifizierung wegen der sehr mangelhaften Beschreibung 
nicht möglich. 

Taenia spiceuligera GIEBEL 1866 (aus Fulica etwa) ist zu mangelhaft 
beschrieben und die Typen zerstört. SInıtTzınE 1896 will die Art ge- 
funden haben und schuf die Varietät T. spieuligera NITZSCH var. varsoviensis 
SINITZINE. Der von SINITZINE beschriebene Cestode ist eine Hymenolepis- 
Art, ob mit T. spieuligera identisch, ist sehr fraglich. SINITZINE gibt 
noch an, daß T. spiculigera synonym sei mit T. inflata (Rup., WEDL); 
dem widerspricht vollkommen ein Vergleich der Hakenformen seiner 
Varietät und der Zeichnung von KRABBE und WEDL. 


Die Cestoden der Vögel. 93 


Charadriiformes. ') 


Taenia coronata KREFFT 1875 

Taenia rugosa KREFFT 1873 

Taenia nilotica KRABBE 1869 

Taenia eryptacantha KRABBE 1869 
Taenia megalorhyncha KRABBE 1869 
Taenia früsiana KRABBE 1882 

Taenia tetrabothroides LÖNNBERG 1890 
Taenia increscens v. LiNSTOW 1888. 


Lariformes. °) 


Taenia distincta LÖNNBERG 1889.”) 


Columbiformes. 


Taenia obvelata KRABBE 1882. 


Podieipediformes. 


Taenia paradoxa KREFFT 1873. 


Aptenodytiformes. 


Taenia xederi BAIRD 1853. 


1) Zu streichende Arten: Von Taenia gallinagınis Run. 1809 
(aus Gallinago gallinago) und Tuenia totani Rup. 1819 (aus Totanus 
stagnatilis und Glottis) existiert das Originalmaterial nicht mehr und ist 
die Beschreibung zu unvollständig, um die Arten wiederzuerkennen, 
Ebenso steht es mit T. charadri RuD., T. tringae Rup. und T. scolopaeis 
Rup., von welchen die Typen sehr schlecht erhalten. Wegen der von 
NırzscH benannten und von GIEBEL beschriebenen Arten dieser Vogel- 
gruppe siehe am Schlusse dieses Abschnittes. Tuenia silieula SCHRANK 
1790 (aus Totanus calidris), (Halysis silieula ZEDER 1803) ist nicht er- 
kenntlich beschrieben, vielleicht identisch mit Hymenolepis sphaerophora 
(Ru».). 

2) Zu streichende Arten: Thenia alcae picae FABrıcıus 1780 
(aus Uria troile) ist nach RUDOLPHI vielleicht eine Bothriocephalide oder 
nach KRABBE Tetrabothrius macrocephalus; die Beschreibung ganz unge- 
nügend. Von Thenia lari cani Rup. 1819 (aus Larus canus) existieren 
die Typen nicht mehr, sie ist nicht aus der Beschreibung zu erkennen. 

Taenia sternae hirundinis Mus. Vind. Cat. ist vielleicht identisch mit 
Choanotaenia inversa Run., eine Beschreibung existiert nicht. 

3) Tuenia distineta scheint eine Dilepis-Art zu sein. 


94 O0. FUHRMAnNN, 


Ciconiiformes. 
Taenia papilla WEDL. 1856 !) 


Taenia brevirostris WEDL. 1856 
Taenia leuckarti KRABBE 1869.') 


Aceipitres. 
Taenia viator LEIDY 1887; 1904. 


Psittaciformes. °) 
Taenia anoplocephaloides FUHRMANN 1902b.?) 


Anseriformes. *) 


Taenia conica MoLın 1858) 
Taenia moschala KREFFT 1873 
Taenia cylindrica KREFFT 1873 


1) Nach KRABBE nähert sich T. papilla WEDL. in der Form der 
Haken sehr der T. leuckarti, und vielleicht ist ersterer einfach der Kranz 
der großen Haken ausgefallen, was die Differenz in der Zahl der Haken 
erklären würde. Synonym: Drepanidotaenia papilla WEDL. STOSSICH 1818. 

2) Zu streichende Arten: Taenia longissima GOEZE 1782 wurde 
von RUDOLPHI als Taenıa filiformis Rup. 1809 beschrieben und wird als 
solche in der Literatur angeführt. doch ist sie, da die Beschreibung sehr 
mangelhaft und der Typus nicht mehr vorhanden, wohl zu streichen, doch 
habe ich sie als fragliche Davainea angeführt. Nach Diesing 1850 ist mit 
ihr ferner synonym Taenia psittaci GMELIN 1790 (s. S. 45). 

3) Dieser Cestode ist wahrscheinlich eine Anoplocephalide, die in 
keinem der bestehenden Genera unterzubringen ist. Der Scolex ist unbekannt. 

4) Zu streichende Arten: Taenia anatis tadornae VIBORG aus 
Tadorna ist nicht zu erkennen. 

Taenia mieroscopiea MIRAM 1890 ist eine junge Taenie ohne Geschlechts- 
organe und aus der mangelhaften Beschreibung ist nichts zu erkennen. 

Taenia transverse elliptica DIES. 1854 (aus Aythya ferina), die Typen 
existieren nicht mehr, sie ist nicht kenntlich beschrieben worden. 

T. imbutiformis (POLONIO 1860) (aus Anas boschas) soll nach RAILLET 
ein Mesocestordes sein, was wohl nicht richtig: diese Art ist sehr mangel- 
haft beschrieben und wohl zu streichen (s. STILES 1896). 

Taenia amphigya CREPL. 1851 wurde eine nicht näher beschriebene 
Taenie aus Aythya ferina Lin. benannt. Der Autorname dieser Taenie 
ist nicht GURLT 1845, wie Braun 1894—1900, p. 1139, angibt. 

Taenia trilineata BATSCH, eine nicht zu identifizierende Taenie aus 
verschiedenen Anas-Arten, soll nach DIESING synonym sein mit T. lineata 
BLocH, T. anatis $ lineata GMELIN, T. longirostris FRÖLICH und Halysis 
trilineata ZEDER 1803. 

5) Tuenia conica MOLIN ist nach KRABBE vielleicht identisch mit 
A. rhombordea d. h. A. furcigera RuD. 


Die Cestoden der Vögel. 95 


Taenia pediformis KREFFT 1873!) 
Taenia bairdii KREFFT 1873 

Taenia macrocantha LINTON 1892 
Taenia destituata LÖNNBERG 1889. 


Coceygiformes. ’) 


Taenia cyclocephala CHATIN 1880. 


Coraciiformes. ?) 
Taenia simpla LEıDy 1887, 1904 


Taenia intricata KRABBE 1882 
Taenia caprimulgi KRABBE 1882. 


| Strigiformes. 
Taenia strigis acadiae LEIDY 1855, 1904. 


Pici. 
Taenia crenata GOEZE 1782 
Taenia vexata LEıDY 1887, 1904, 


Passeriformes. ?) 
Taenia platycephala Rup. 1809 ?) 


1) Taenia pediformis KREFFT ist nach WOLFFHÜGEL vielleicht synonym 
mit Fimbriaria faseiolarıs (PALLAS). 

2) Aus dieser Vogelgruppe wird Tuenia fihformis RuD. (synonym mit 
T. longissima GOEZE) erwähnt; da die Originalbeschreibung dieses Papagei- 
cestoden sehr mangelhaft, so ist es sicher, daß die Bestimmung eine un- 
richtige ist. 

3) Zu streichende Arten: Von Taenia piei Run. 1809 aus 
Dendrocopus medius und Taenia coraciae Cat. M. V. (aus (oracias garrulus) 
existieren die Typen nicht mehr, und die Beschreibung ist mangelhaft oder 
ganz fehlend.. PAroOnA 1902 benennt eine Taenie Aymenolepis coracıae 
RuD. aus Coracias garrula, doch ist die Bestimmung wertlos, da keine 
Beschreibung dieser Taenie existiert. 

4) Zu streichende Arten: Taenia nasuta RuD., mit welcher nach 
DieEsinG 1850 Alyselminthus pari ZEDER 1800 und Halysis parı ZEDER 
1858 synonym sein soll, ist, wie ich am Öriginalmaterial, das aus Parus 
major stammt, erkennen konnte, eine Bothriocephalide ohne entwickelte 
Geschlechtsorgane; alle von ältern Autoren als T. nasuta bezeichneten 
Cestoden sind, wie aus DUJARDIN hervorzugehen scheint, identisch mit 
H. fringillarum RuD., wie übrigens auch KRABBE 1869 annimmt. Von 
Taenia turdi Rup. 1819 (aus Turdus sp.) und T. dendrocolaptis RuD. (aus 
Dendrocolaptes) ist das Originalmaterial in unbrauchbarem Zustande. T. 
turdi musiei I u. II von BELLINGHAM 1844 und Taenia amadinae CoBBOLD 
1861 (aus Spermestes cueullata) sind als Species inquirendae zu streichen. 


96 O0. FUHRMANN, 


Taenia pyramidata Run. 1819 

Taenia motacillae eayaneae Rup. 1819 

Taenia motacillae provincialis Rup. 1819; KRABBE 1869 
Taenia motacillae brasiliensis Rup. 1819; KrABBE 1869 
Taenia exigua DUJARDIN 1845 

Taenia purpurata DUJARDIN 1845 

Taenia pestifera Leıpy 1855, 1887, 1904 

Taenia urnigera LEIDY 1855, 1904 

Taenıa oporornis LEIDY 1887, 1904 

Taenia chlamydoderae KREFFT 1873 

Taenia colliculorum KRABBE 1869 

Taenia praecox KRABBE 1882 

Taenia polyarthra KRABBE 1882 

Taenia pyramidalis SINITZINE 1896 }) 

Taenia muscicapae v. LINSTOW 

Taenia coracına ParonA 1901. 


Taenia innomminata KragsE 1879, 1882; Cestode dessen Wirt 
nicht genau bekannt und der aus einer Bachstelze oder Grasmücke 
stammen soll. 


Bei GIEBEL 1857 findet sich eine Reihe von neuen Cestodenarten 
mit dem Autornamen NırzscH, die aber nie von demselben be- 
beschrieben wurden und die also wohl Museumsnamen sind. Da, 
wie mir Herr Prof. GrEvacHER (Halle) mitteilt, die ganze helmintho- 
logische Sammlung von Nrrzsch vertrocknet ist, können diese Arten 
nicht mehr identifiziert werden. Diese Namen ohne Beschreibung 


Taenia emberixzarum C. M. V. (aus Emberiza-Arten) und Taenia coecco- 
thraustis C. M. V. (aus Coccothrausthes) sind nicht zu erkennen, da das 
Originalmaterial der erstern sehr schlecht erhalten, der letztern verloren 
gegangen ist. Tuenia loxiae curvirostrae BLUMENBACH, von ZEDER 
Halysis loxiae ZEDER 1803 genannt, ist zu streichen. Tüaenia planiceps 
v. SIEBOLD 1848 (aus Ohelidonaria urbica und Hirundo rustica) ist nicht 
zu erkennen. Die Typen fehlen. 

Taenia pyramidalis DIESING (aus Xiphorhynchus procurvus TEMM. und 
Dendroeincla turdina) 1850 ist nach DIESING identisch mit Tuenia dendro- 
colaptis Rupd. Die Typen ersterer existieren nicht mehr, und die Arten 
sind unkenntlich beschrieben. 

5) Soll synonym sein mit T. alaudae Rup. 1809. Die Taenie hat 
nach dem ÖOriginalmaterial unregelmäßig abwechselnd alternierende Genital- 
öffnungen und scheint mir in das Genus Anomotaenia zu gehören. Scolex 
fehlt leider. 

1) Synonymie: Hymenolepis pyramdalis SINITZINE 1896; ganz un- 
kenntlich beschrieben. 


Die Cestoden der Vögel. 97 


und nur mit Wirtsangabe versehen, sind folgende: 7. macrocephala 
NrrzschH (Oriolus), T. mastigodes NıTzscH (Anas), T. gutturosa NITzZscH 
(Corvus), T. spieuligera NITzSscH* (Tringa und Fulica!), T. exartieulata 
Nırzsch (Tringa), T. triangularıs Nırzsch (Tringa), T. muricata NITzsch 
(Tringa), T. filirostris NırzscH” (Scolopax), T. chaotica NırzscH* Scolo- 
pax), T. eurycephala Nırzsch (Picus), T. oligotoma Nırzsch (von Rv- 
DoLpHI beschrieben, also Run. der eigentliche Autorname) (aus 
Scolopax), T. megalops Nırzsch (Anas), T. frustulum Niırzsch* 
(Oypselus). Von diesen Arten hat GısBer 1866 die mit einem 
Sternchen versehenen kurz beschrieben, dieselben sollten also eigent- 
lich den Autornamen GIEBEL tragen. Außerdem finden wir in 
GIEBEL 1866 noch beschrieben 7. striata« GIEBEL 1866 und 7. nitzschi 
GIEBEL 1866. Von allen diesen Arten kann nur die überaus typische 
und von CREpLIN beschriebene Aymenolepis megalops bestehen bleiben, 
alle anderen sind meist fragliche Synonyme bereits bekannter Arten, 
teils unkenntlich oder gar nicht beschrieben. Ich hätte alle diese 
Namen nicht erwähnt, wenn man dieselben nicht hier und da in der 
Literatur, in Faunenlisten, aufgezeichnet fände. Alle diese Art- 
namen (mit Ausnahme von T7. megalops) haben endgültig zu ver- 
schwinden, sie sind ein unnützer und schädlicher Ballast. 

DiresiıngG (1854) gibt noch folgende ebenfalls zu streichende 
nomina nuda an: T. abbreviata MenLıs (CreprLın 1846), ferner von 
BELLINGHAM 1844 T. tetraonis scotici BELLINGHAM, T. galli domestici 
BELLINGHAM, T. haematopodis ostralegi BELLINGHAM, T. sternae dou- 
galli BELLINGHAM, T. alcae tordae BELLINGHAM. 


II Faunistischer Teil. 


Seit dem Erscheinen von v. Listow’s Compendium der 
Helminthologie hat diese Wissenschaft bedeutende Fortschritte 
gemacht, namentlich auf dem Gebiete der Kenntnis der Vogelcestoden, 
wie sich aus einem Vergleich des betreffenden Kapitels in v. Lixstow’s 
Arbeit mit den nachfolgenden Zeilen ohne weiteres ergibt. 

Ein eingehender Vergleich ist aber nicht ohne weiteres möglich, 
weil ich mich veranlaßt sah, nicht nur die systematische Anordnung 
der Vögel zu ändern, sondern auch die Vogelnamen nach dem 
klassischen Katalog der Vögel des Britischen Museums anzugeben. 
Es zeigt sich in der Helminthologie eine große Vernachlässigung 
in der Benennung der Wirtstiere, und es werden auch in den neuern 
Arbeiten oft ganz ungebräuchliche Namen angewandt. So kam es, 

Zool. Jahrb., Supplement X. ‘ 


98 O. Funrumann, 


daß in unserer faunistischen Zusammenstellung die Mehrzahl der 
Vogelartnamen umgeändert werden mußte. Bei einigen Vögeln 
konnte ich den in der Literatur oder in Sammlungen angegebenen 
Artnamen in obengenanntem Katalog nicht finden, sie sind deshalb 
mit einem Fragezeichen versehen worden. 

Die sicher unrichtigen faunistischen Angaben die Cestoden be- 
treffend sowie zahlreiche bei v. Lisstow angeführte nicht mehr 
geltende Artnamen sind berichtigt oder weggelassen worden. Im 
allgemeinen sowie in den Fußnoten des systematischen Teiles dieser 
Arbeit findet man die Gründe für diese Änderungen und Streichungen 
angegeben. 

Ich habe es für zoogeographische Betrachtungen, die auch in 
der Helminthologie ein großes Interesse beanspruchen dürfen, vorteil- 
haft gefunden, unter jedem Wirtstier seine geographische Verbreitung 
anzugeben. 

Ebenso habe ich bei jeder Vogelgruppe alle in ihr parasitierenden 
Taenien-Arten zusammengestellt, was erlaubt, sofort über die für 
jede Vogelordnung typische Cestoden-Fauna einen Überblick zu 
eewinnen. Hierdurch wird die Bestimmung und das Erkennen neuer 
Arten bedeutend erleichtert. 


Struthioniformes. 
Davainea struthionis (HOUTTOYN). 


Struthio camelus Lisn. 
Geographische Verbreitung: Süd-Palästina, Sudan, Arabien. 
Davainea struthionis (HOUTTOYN). 


Struthio molybdophanus RCuNWw. 
Geographische Verbreitung: Somaliland. 
Davainea struthionis (HOUTTOYN). 


Rheiformes. 
Orttotaenia rheae FUHRMANN 
Davainea struthionis (HOUTTOYN) 
Chapmania tawricollis (CHAPMAN). 


Rrhea americana CHAPMAN. 
Geographische Verbreitung: Zentral-Brasilien bis Argen- 
tinien. 


Cittotaenia rheae FUHRMANN 


Die Cestoden der Vögel. 99 


? Davainea struthionis (HOUTTOYN) (s. S. 6 u. 19) 
Idiogenes tauricollis (CHAPMAN). 


Casuariiformes. 
Davainea australis (KRABBE) 
Cotugnia collini FUHRMANN. 
Dromaeus novaehollandiae Latn. 
Geographische Verbreitung: Ost-Australien. 
Davainea australis (KRABBE) 


Cotugnia collini FUHRMANN. 


Apterygiformes, 
Anomotaenia minuta (BENHAM) 
Choanotaenia apterygis (BENHAM) 
Taenia apterycis CHATIN. 
Apteryx australis SHAW. 
Geographische Verbreitung: Südinsel von Neuseeland. 


Taenia apterycis CHATIN. 


Apteryx mantelli BARTL. 
Geographische Verbreitung: Nordinsel von Neuseeland. 


Anomotaenia minula (BENHAM) 
Choanotaenia apterygis (BENHAM). 


Crypturiformes. 


Davamea oligacantha FUHRMANN 
Davainea elongata FUHRMANN 
Davainea capillaris FUHRMANN 
Davainea erypturi FUHRMANN 
Hymenolepis pauciovata FUHRMANN. 


Tinamus sp. 
Geographische Verbreitune: Brasilien. 
Davainea oligacantha FUHRMANN 


Davainea elongata FUHRMANN. 


Orypturus aeneus? 
Geographische Verbreitung: Brasilien. 
Davainea capillaris FUHRMANN. 


100 O0. FUHRMANN, 


Crypturus erythropus (PE1z.). 
Geographische Verbreitung: Zentral-Brasilien. 


Hymenolepis pauciovala FUHRMANN. 


Crypturus noctivagus (NEUWIED). 
Geographische Verbreitung: Ost-Brasilien. 
Davainea erypturi FUHRMANN. 


Nothura media (SPIx). 
Geographische Verbreitung: Süd-Brasilien. 
Davainea elongata FUHRMANN. 


Rhyncholus rufescens (Temn.) 
Geographische Verbreitung: Paraguay, Uruguay, Argen- 
tinien, Süd-Brasilien. 


Davainea elongata FUHRMANN 
Davainea oligacantha FUHRMANN. 


Galliformes. 


Zscholkea linstowi (PARONA) 
Davainea urogalli (MODEER) 
Davainea cesticillus (MOLIN) 
Davainea tetragoma (MOLIN) 
Davainea? longicollis (MOLIN) 
Davainea cantaniana (POLONIO) 
Davainea proglottina (DAVAINE) 
Davainea proglottina var. dublanensis KOWALEWSKI 
Davainea circumvallata (KRABBE) 
Davainea echinobothrida MEGNIN 
Davainea friedbergi v. LINSTOW 
Davainea parechinobothrida MAGALHAES 
Davainea globocaudata COHN 
Davainea mutabilis RÜTHER 
Davainea retusa CLERC 

Davainea globirostris FUHRMANN 
Davainea volzi FUHRMANN 
Davainea leptacantha FUHRMANN 
Davainea pintneri KLAPTOCZ 
Davainea penelopina FUHRMANN 
Davainea polyuterina FUHRMANN 
Davainea campanulata FUHRMANN 
Polycoelia lata FUHRMANN 
Ootugnia digonopora (PASQUALE) 


Die Cestoden der Vögel. 


Cotugnia erassa FUHRMANN 
Choanotaenia campanulata FUHRMANN 
Amoebotaenia cuneata (v. LINSTOW) 
Metroliasthes lucida RANSOM 
Rhabdomeltra tomica CHOLODKOVSKY 
Rhabdometra nigropunctata (CRETY) 
Monopylidium infundibulum (BLOCH) 
Hymenolepis linea (GOEZE) 
Hymenolepis exilis (DUJARDIN) 
Hymenolepis mierops (DIESING) 
? Hymenolepis villosa (BLOCH) 
Hiymenolepis carioca (MAGALHAES) 
Hymenolepis meleagris CLERC 
Hymenolepis musceulosa CLERC 
Hymenolepis phasianina FUHRMANN 
? Fimbriaria faseiolaris (PALLAS) 
Taenia echinata OLSSON 
Taenia odiosa LEIDY 
Tetrathyridium perdieis-saxatilis RUD. 
[3 


Crax alector Lixn. 


101 


Geographische Verbreitung: Südliches Südamerika. 


Davainea leptacantha FUHRMANN. 


Cras& faseciolata SP. 


Geographische Verbreitung: Südliches Südamerika. 


Davainea leptacantha FUHRMANN. 


Crax sp. 
Geographische Verbreitung: Brasilien. 


Davainea leptacantha FUHRMANN. 


Penelope obscura ILLIGER. 
Geographische Verbreitung: Südamerika. 


Davainea penelopina FUHRMANN. 


Lagopus scoticus (LATH.). 


Geographische Verbreitung: Großbritannien, 
Hebriden, Orknei. 


Davainea wrogalli MODEER 
Hymenolepis microps DIESING. 


Irland, 


102 O. FuHruann, 


Lagopus mutus (Moxtin.). 
Geographische Verbreitung: Gebirge Europas. 


Taenia echinata OLSSON. 


Tetrao urogallus Lixn. 
Geographische Verbreitung: Europa, Nord- und Zentral- 
Asien. 


Davamea urogalli (MODEER) 
Davainea globocaudatus COHN 
Hymenolepis microps (DIESING). 


Lyrurus tetris (Lin8.). 
Geographische Verbreitung: Europa, Nord- und Zentral- 
Asien. 
Davainea wrogalli (MODEER) 


Davainea retusa CLERC 
Rhabdometra tomica CHOLODKOVSKY. 


Tetraogallus himalagensis GRAY. 
Geographische Verbreitung: Himalaya. 


Davainea urogalli (MODEER) !) (?) 
? Hymenolepis villosa (BLOCH).?) 


Caccabis sasxatilis (WOLF et MEYER). 


Geographische Verbreitung: Berge von Zentral und 
Süd-Europa. 


Davainea wrogalli (MODEER)!) (?) 
Hymenolepis lines (GOEZE) 
Tetrathyridium perdieis-saxatilis RuD. 


1) Wenn die Zeichnung KrAzpe’s (1882) fig. 62 richtig ist, ist die 
betreffende Davainea nicht Dav. urogalli, da bei letzterer Taenie die Eier 
einzeln im Parenchym liegen und nicht zu mehreren in Parenchymkapseln 
beisammen sind. 

2) Nach den Angaben von KRABBE zu schließen ebenfalls eine andere 
Art, da die Haken statt 0,024—-0,026 mm nur 0,011 mm lang sind. 


Die Cestoden der Vögel. 103 


Caccabis petrosa (GM.). 
Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Nord-Afrika, 
Canarische Inseln. 


Davainea eircumwvallata (KRABBE) 
Hymenolepis linea (GOEZE). 


Centrocercus urophasianus (LiNN.). 
Geographische Verbreitung: Nordamerika (Canada) bis 
Paraguay, Peru, Galapagos. 


Hymenolepis microps (DIES.)!) (P). 


Perdis perdis (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Europa, West- und Zentral- 
Asien. 
Davainea circumvallata (KRABBE) 
Davainea globirostris FUHRMANN 
Monopylidium infundibulum (BLOCH) 


Hymenolepis linea (GOEZE) 
Davainea polyuterina FUHRMANN. 


Perdix sp. 


Fundort: Brasilien. 


Davainea campamulata FUHRMANN. 


Coturnix coturnix (LiN.). 
Geographische Verbreitung: Asien, Europa und im 
Winter Indien und Afrika. 


Davainea circumvallata (KRABBE) 
Davainea polyuterina FUHRMANN 
Monopylidium infundibulum (BLOCH) 
Ithabdometra nigropunetata (ÜRETY) 
Hymenolepis linea (GOEZE). 


1) Diese Angabe Leıpy’s 1887 ist nicht richtig; die von ihm ge- 
fundene Taenie ist wohl eine Davainea-Art. 


104 O0. FuHrmanrn. 


Phasianus colchicus Lisn. 
Geographische Verbreitung: Südost-Europa. 


Davainea cantaniana (POLONIO) 
Davainea friedbergi v. LINSTOW 
Monopylidium infundibulum (BLOCH) 
Hlymenolepis phastanina FUHRMANN. 


Gallus gallus (Lisy.) dom. 


Davainea tetragona (MoLIN) 

Davainea cestieillus (MOLIN) 

Davainea? longicollis (MOLIN) 
Davainea canlaniana (POLONIO) 
Dawvainea echinobothrida (MEGNIN) 
Davainea proglottina (DAVAINE) 
Davainea proglottina var. dublanensis KOWALEVSKI 
Davainea mutabilis RÜTHER 

Davainea parechinobothrida MAGALHAES 
Davainea volzii FUHRMANN 

Cotugnia digonopora (PASQUALE) 
Amoebotaenia cumeata (v. LINSTOW) 
Monopylidium infundibulum (BLOCH) 
Hymenolepis carıoca (MAGALHAES) 

? Hymenolepis villosa (BLOCH) 
Hymenolepis exilis (DUJARDIN) 

? Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Numida ptilorhyncha Licht. 
Geographische Verbreitung: Äquatorial- und Nordost- 
Afrika. 


Zschokkia linstowi (PARONA) 
Davainea pintneri KLAPTOCZ 
Polycoelia lata FUHRMANN. 


Numida rikwae RcHw. 
Geographische Verbreitung: Rikwa-See. 
Cotugnia crassa FUHRMANN. 


Meleagris gallopavo Lisn. 


Geographische Verbreitung: Nord-Mexiko, Arizona, Neu- 
mexiko und West-Texas. 


Davainea cantaniana (POLONIO) 
Metroliasthes lucida RANSOM 


Die Cestoden der Vögel. 105 


Hymenolepis meleagris CLERC 
Hıymenolepis musculosa CLERC. 


Ortyx virginianus (LinN.). 
Geographische Verbreitung: Östliches Nordamerika. 
Taenia odiosa LEIDY. 


Opisthocomus hoazin ILLIGER. 


Geographische Verbreitung: Surinam, Bolivia, Amazonia, 
Guiana. 


Ohoanotaenia campanulata FUHRMANN. 


Ralliformes. 
Anomotaenia pyriformis (WEDL) 
Monopylidium marchali (MoLA) 
Hymenolepis poculifera (v. LINSTOW) 
? Hymenolepis analina (KRABBE) !) 
Diorchis inflata (RuD.) 
? Diorchis acuminata CLERC !) 
Aecoleus longispieulus (STOSSICH) 
Taenia gallinula VAN BENEDEN. 


Crex cres& (Linx.). 
Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien; im 
Winter Arabien, West-Afrika. 


Anomotaenia pyriformis (WEDL). 


Gallinula chloropus (Lixn.) 
Geographische Verbreitung: Europa, Afrika, Asien. 


Monopylidium marchali (MoLA) 
Taenia gallinula VAN BENEDEN. 


Fulica atra Linn. 


Geographische Verbreitung: Europa, Asien, Java, Sumatra 
Celebes. 


? Diorchis acuminata CLERC !) 
Diorchis inflata (RuD.) ?) 
Hymenolepis poculifera (v. LINSTOW) 
? Hymenolepis anatina (KRABBE).!) 


1) Hymenolepis anatina und Diorchis acuminata sind von demselben 
Autor auch in Anseriformes gefunden worden. Siehe Näheres hierüber S. 7. 

2) WenL 1856 zitiert ebenfalls D. inflata aus Fulica, doch ist seine 
Art nicht identisch mit der wirklichen T. inflata, sondern vielleicht mit 
H. poeulifera (v. LINSTOW). 


106 0. Funruans, 


Zaporina parva ScoP. 


Geographische Verbreitung: Zentral- u. Süd-Europa; 
im Winter in Nordwest-Indien und Nordost-Afrika. 


Acoleus longispiculus (STOSSICH). 


Gruiformes. 
Davainea brachyrhyncha (OREPLIN) 
Idiogenes horridus FUHRMANN 
Dilepis macrocephala FUHRMANN. 
Cariama cristata L. 

Geographische Verbreitung: Brasilien, Paraguay. 
Davainea brachyrhyncha (CREPLIN) 
Idiogenes horridus FUHRMANN. 

Psophia crepitans Liss. 
Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia. 


Dilepis macrocephala FUHRMANN. 


Otidiformes. 


Idiogenes otidis (KRABBE) 
Chapmania tapika ÖLERC 
Hymenolepis villosa (BLOCH) 
Hymenolepis tetracis CHOLODKOVSKY 
Hymenolepis ambiguus CLERC. 


Otis tarda Linn. 


Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Zentral-Europa, 
Nord-Afrika, Zentral-Asien und Nordwest-Indien. 


Idiogenes otidis KRABBE 
Hymenolepis villosa (BLOCH). 


Tetrax tetrax (Liıxx.). 


Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Nord-Afrika, 
Zentral-Asien, Nordwest-Indien. 
Idiogenes otidis KRABBE 


Chapmamıa tapika CLERC 
Hymenolepis villosa (BLOCH) 


Die Cestoden der Vögel. 107 


Hymenolepis tetracis CHOLODKOVSKY 
Hiymenolepis ambigwus CLERC. 


Houbara undulata (Jaca.). 
Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer. 


Idiogenes otidis (KRABBE). 


Charadriiformes. 


Charadrü. 


? Tetrabothrius macrocephalus RuD. 
Ophryocotyle proteus FRIIS 
Ophryoeotyle insignis LÖNNBERG 
Davainea minuta COHN 

Dilepis retirostris (KRABBE) 

Dilepis nımphordes UÜLERC 

Dilepis limosa FUHRMANN 

Dilepis untlateralis FUHRMANN 
Dilepis recapta CLERC 
Trichocephalordes megalocephala (KRABBE) 
Trichocephaloides birostrata CLERC 
Anomotaenia stentorea (FRÖHLICH) 
Anomotaenia nymphaea (SCHRANK) 
Anomotaenia arionis (V. SIEBOLD) 
Anomotaemia globulus (WEDL) 
Anomotaenia bacilligera (KRABBE) 
Anomotaenia citrus (KRABBE) 
Anomotaenia clavigera (KRABBE) 
Anomotaenia mierorhıymeha (KRABBE) 
Anomotaenia platyrhyncha (KRABBE) 
Anomotaenia microphallos (KRABBE) 
“nomotaenia ericetorum (KRABBE) 
Anomotaenia? micracantha (KRABBE) 
Anomotaenia volvulus (v. LINSTOW) 
Anomotaenia eingulata (v. LINSTOW) 
Anomotaenia macracantha FUHRMANN 
Anomotaenia macracanthoides FUHRMANN 
Choanotaenia laevigata (RuD.) 
Choanotaenia paradoxa (RuD.) 
Choanotaenia coronata (CREPLIN) 
Choanotaenia stellifera (KRABBE) 
C'hoanotaenia embryo (KRABBE) 
Choanotaenia aegyptiea (KRABBE) 
Choanotaenia slesvicensis (KRABBE) 
Choanotaenia intermedia FUHRMANN 


108 O. FUHRMANN, 
Choanotaenia arguata CLERC 
Amoebotaenia vanelli FUHRMANN 
‚Amoebotaenia brevis (v. LINSTOW) 
Amoebotaenia brevicollis FUHRMANN 
Fuhrmannia alternans (COHN) 
Monopylidium einguliferum (KRABBE) 
Monopylidium macracanthum FUHRMANN 
Monopylidium cayennense FUHRMANN 
Monopylidium secundum FUHRMANN 
Monopylidium rostellatum FUHRMANN 


Hymenolepis 
Hymenolepts 
Hhymenolepis 
Hıymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hıymenolepis 
Hhymenolepis 
Hymenolepis 
Hiymenolepts 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 


sphaerophora (RuD.) 
longirostris (RUD.) 
amphitricha (RUD.) 
interrupta (RUD.) 
brachycephala (CREPLIN) 
uliginosa (KRABBE) 
recurvirostra (KRABBE) 
himantopodis (KRABBE) 
clandestina (KRABBE) 
minuta (KRABBE) 
vallei STOSSICH 
spinosa V. LINSTOW 
rectacantha FUHRMANN 
styloides FUHRMANN 


Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 


(Echinoeotyle) nitida (KRABBE) 
(Echinoeotyle) nitidulans (KRABBE) 
(Echinocotyle) uralensis CLERC 


Hymenolepis 
Aploparaksis 
Aploparaksis 
Aploparaksis 
Aploparaksis 
Aploparaksis 
Aploparaksıs 


(Echinocotyle) tenwis ÜLERC 
filum (GOEZE) 


filum var. pseudofilum CLERC 


crassirostris (KRABBE) 
hirsuta (KRABBE) 
brachyphallos (KRABBE) 
penetrans CLERC 


Aploparaksis diminuens v. LINSTOW 
Acoleus vaginatus (RUD.) 

Acoleus erassus FUHRMANN 
Gyrocoelia perverse FUHRMANN 
(yrocoelia leuce FUHRMANN 
Gyrocoelia brevis FUHRMANN 
Gyrocoelia paradoxus (v. LINSTOW) 
Diplophallus polymorpha KRABBE 
Shipleya inermis FUHRMANN 
Copesoma papillosum SINITZINE 
Taenia coronata KREFFT 

Taenia rugosa KREFFT 

Taenia früsiana KRABBE 

Taenia nilotica KRABBE 


Die Cestoden der Vögel. 


Taenia eryptacantha KRABBE 
Taenia megalorhyncha KRABBE 
Taenia tetrabothriordes LÖNNBERG 
Taenia incerescens v. LINSTOW. 


Charadriiformes. 


Arenaria interpres (Lins.). 
Geographische Verbreitung: Ganze Welt. 


Anomotaenia clavigera (KRABBE) 
Dilepis retirostris (KRABBE) 
Hymenolepis filum (GOEZE). 


Lobipulvia malabarica (BoD».). 
Geographische Verbreitung: Indien, Ceylon. 


Anomotaenia volvulus (v. LINSTOW). 


Haematopus ostralegus Linn. 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien; 


Winter Ägypten, Rotes Meer, Nordwest-Indien. 
Choanotaenia paradoxa (RuD.) 
Hnymenolepis elandestina (KRABBE) (ÜREPLIN) 
Hhymenolepis crassirostris (KRABBE) 
Ophryocotyle insignis LÖNNBERG. 
Haematopus unicolor (WasL.) ? 
Geographische Verbreitung: Australien, Neuseeland. 


Taenia incerescens V. LINSTOW. 


Hoplopterus spinosus (Lixn.). 


109 


im 


Geographische Verbreitung: Südost-Europa, Nordost- 


Afrika. 


Gyrocoelia brevis FUHRMANN 
Choanotaenia laevigata (RuD.). 


110 OÖ. FUHRMANN, 


Vanellus vanellus (Lixn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Sibirien, 


Japan, Nordwest-Indien. 
Anomotaenia stentorea (FRÖLICH) 
Anomotaenia microphallos (KRABBE). 
Vanellus drongolanus?. 
Fundort: Ägypten. 


Amoebotaenia vanelli FUHRMANN. 


Vanellus aegypticus ?. 
Fundort: Ägypten. 


Hrymenolepis styloıdes FUHRMANN. 


Vanellus sp. 
Fundort: Südamerika. 


Gyrocoelia leuce FUHRMANN. 


Vanellus sp. 
Fundort: Ägypten. 
Gyrocoelia perverse FUHRMANN. 


Vanellus sp. 
Fundort: Ägypten. 


Anomotaenia macracanthoides FUHRMANN. 


Belonopterus cayennensis (GM.). 
Geographische Verbreitung: Südamerika. 
Anomotaenia macracantha FUHRMANN 
Monopylidium secundum FUHRMANN 
Monopylidium cayennense FUHRMANN 


Aecoleus vaginatus (RUD.). 
Gyrocoelia leuce FUHRMANN. 


Hoploxypterus cayanus (LATH.). 
Geographische Verbreitung: Südamerika. 
Dilepis unilateralis FUHRMANN 


China, 


Die Cestoden der Vögel. 
Choanotaenia laevigata (RUD.) 


Aploporaksis filum (GOEZE) 
Gyroeoelia leuce FUHRMANN. 


Charadrius pluvialis L. 


Geographische Verbreitung: Europa, West-Sibirien; 


Winter Nord-Afrika. 


Anomotaenia ericetorum (KRABBE) 
Anomotaenia microrhymeha (KRABBE) 
Choanotaenia paradoxa (RuD.) 
Choanotaenia laevigata (RuD.) 
Amoebotaenia brevis v. LINSTOW. 


Charadrius nubicus ? 
Fundort: Agypten. 


Gyrocoelia brevis FUHRMANN 
Amoebotaenia breweollis FUHRMANN. 


Charadrius suezensis ? 


Fundort: Agypten. 
(Gyrocoelia brevis FUHRMANN 
Hymenolepis crassirostris (KRABBE). 
Charadrius aegypticus ? 
Fundort: Agypten. 


Amoebotaenia brevis (v. LINSTOW). 


Charadrius spinosus ? 
Fundort: Ägypten. 


Amoebotaenia brewieollis FUHRMANN. 


Charadrius sp. 
Zundort; ? 


Choanotaenia coronata (CREPL.). 


Squatarola helvetica (L.). 


Geographische Verbreitung: Ganze Welt. 


Anomotaenia stentorea (FRÖLICH) 
Hymenolepis cerassirostris (KRABBE) 
Amoebotaenia brevis (v. LINSTOW). 


MI 


im 


112 O. Funrmans, 


Eudromias morinellus (Lixn.). 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Sibirien; im 
Winter Mittelmeerländer, Nordost-Afrika. 


Anomotaenia microphallos (KRABBE). 


Aegialites hiaticola (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Von Grönland bis Kap- 
kolonie. 


Ophryocotyle proteus FRIES 

‚Anomotaenia mierorhyncha (KRABBE) 
Choanotaenia laevigata (RuD.) 

Hymenolepis cerassırostris (KRABBE) 
Hymenolepis (Echinocotyle) nitidulans (KRABBE) 
Hymenolepis rectacantha FUHRMANN 
Aploporaksis brachyphallos (KRABBE) 
Amoebotaenia brevis (v. LINSTOW). 


Aegialites nivosa Üass. 


Geographische Verbreitung: Westl. Nordamerika, Zentral- 
amerika, westl. Südamerika bis Peru. 


Ohoanotaenia laevigata (RUD.). 
Choanotaenia coronata (CREPL.) 
Aegialites fluviatilis BECHST. 


Geographische Verbreitung: Europa, Sibirien, Japan; 
im Winter Nordost-Afrika, Indien, Molukken. 


Choanotaenia laevigata (RUD.). 


Aegialites dubia Sco». 


Geographische Verbreitung: Europa und Asien, Nord- 
Afrika, Indien. 


Anomotaenia microrhyncha (KRABBE) 
Monopylidium eingulifera (KRABBE). 
Aegialites alexandrina (Linx.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien; im 
Winter in China, Japan, Afrika, Indien, Australien. 


Hymenolepis crassirostris (KRABBE). 


Die Cestoden der Vögel. 113 


Aegialites collaris VIEILL. 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Südamerika, 
Kleine Antillen. 


Gyrocoelia leuce FUHRMANN. 


Ochthodromus mongolica PaALL. 


Geographische Verbreitung: Sibirien, Alaska; im Winter 
Philippinen, Molukken, Australien. 


Gyrocoelia paradoxa (v. LINSTOW). 


Himantopus himantopus (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Afrika, Zentral- 
Asien, Ceylon, West-China. 
Hymenolepis himantopodis KRABBE 


Diplophallus polymorphus (KRABBE) 
Aecoleus vaginatus (RuD.). 


Himantopus wilsonii Temm.? 
Fundort; Brasilien. 


Hymenolepis himantopodis (KRABBE) 
Aecoleus vaginatus (RUD.). 


Himantopus mexicanus P. et L. MÜLLER. 


Geographische Verbreitung: Südl. Nordamerika, Zentral- 
amerika, Südamerika bis Amazonia. 
Monopylidium rostellatum FUHRMANN 
Hymenolepis himantopodıs (KRABBE) 


Diplophallus polymorphus (KRABBE) 
Aeoleus vaginatus (RuD.). 


Himantopus leucocephalus GOULD. 


Geographische Verbreitung: Australien, Neuguinea, 
Molukken, Sunda-Inseln. 


Taenia eoronata KREFFT 
Taenia rugosa KREFFT. 


Zool. Jahrb., Supplement X. 8 


114 OÖ. FUHRMANN, 


Recurvirostra avocetta Linn. 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Afrika, Asien, Indien, Ceylon. 


Hymenolepis recurvirostra (KRABBE) 
Diplophallus polymorphus (KRABBE). 


Numenius arquatus (Lixn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Asien; im Winter 
Afrika, Indien, Süd-China, Malayische Inseln. 


Anomotaenia nymphaea (SCHRANK) 
Choanotaenia paradoxa (RuD.) 
Choanotaenia arquata CLERC 
Hymenolepis sphaerophora (RUD.) 
Hymenolepis uliginosa (KRABBE) 
Eehinoecotyle sp. 

Aploparaksis filum (GOEZE). 


Numenius phaeopus (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Grönland; im 
Winter Afrika, Indien. 


Anomotaenia nymphaea (SCHRANK) 
Hymenolepis uliginosa (KRABBE) 
Dilepis limosa FUHRMANN. 


Numenius tenuirostris VIEILLOT. 
Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer. 
Hymenolepis sphaerophora (RuD.). 


Numenius borealis LATH. 


Geographische Verbreitung: Nordamerika; im Winter 
Südamerika. 


Anomotaenia nymphaea (SCHRANK). 


Numenius arabicus ?. 
Fundort: Ägypten. 


Anomotaenia nymphaea (SCHRANK). 


Die Cestoden der Vögel. 115 


Numenius sp. 
Fundort: Brasilien. 


Anomotaenia nymphaea (SCHRANK). 


Numenius sp. 
Fundort: Brasilien. 


Ophryoeotyle insignis LÖNNBERG. 


Limosa limosa (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Nord-Europa; 
im Winter Mittelmeerländer bis Abyssinien. 


Dilepis limosa FUHRMANN 
Hymenolepis (Eehinocotyle) nitida (KRABBE) 
Aploparaksıs filum (GOEZE). 


Limosa lapponica (Lisx.). 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa; im Winter 
Mittelmeerländar. 


Ophryocotyle proteus FRIIS 
Aploparaksis filum (GOEZE) 
Gyrocoelia perverse FUHRMANN. 


Totanus calidris (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Mittelmeerländer, 
Kleinasien, Afrika, Indien, Malayischer Archipel. 


Triehocephalus megalocephala (KRABBE) 
Anomotaenia stentorea (F'RÖLICH) 
Anomotaenia platyrhyncha (KRABBE) 
Monopylidium ceinguliferum (KRABBE) 
Hymenolepis amphitricha (KRABBE) 
Aploparaksis filum (KRABBE). 


Totanus stagnatilis BECHST. 
Geographische Verbreitung: Süd-Europa bis Nordost- 
Asien; im Winter Afrika, Indien, Malayischer Archipel, Australien. 


Aploparaksis cerassirostris (KRABBE). 
8*+ 


116 O. FUHRMAnN, 


Totanus flavipes (GM.). 


Geographische Verbreitung: Nordamerika; im Winter 
Südamerika bis Buenos Aires. 


Anomotaenia ariomis (V. SIEBOLD). 


Totanus melanoleucus (GM.). 
Geographische Verbreitung: Nordamerika; im Winter 
Südamerika. 


Anomotaenia arionis (V. SIEBOLD). 


Totanus sp. 
Fundort: Ural. 


Monopylidium einguliferum (KRABBE) 
Hıymenolepis (Echinocotyle) tenwis ÜLERC. 


Helodromas ochropus (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Alte Welt, Nord-Asien; im 
Winter Afrika, Indien. 
Anomotaenia globulus (WEDL.) 
Anomotaenia arionis (V. SIEBOLD) 
Monopylidium macracanthum FUHRMANN 
Aploparaksis filum (GOEZE) 
Aploparaksis hirsuta (KRABBE). 


Rhyacophilus glareola (G1.). 
Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien; im 
Winter Afrika, Indien bis Australien. 
? Tetrabothrius macrocephalus Ru». 


Anomotaenia sientorea (FRÖLICH) 
Monopylidium einguliferum (KRABBE). 


Tringoides hypoleucus (Lis®.). 


Geographische Verbreitung: Alte Welt; im Winter 
Afrika, Indien, Australien. 


Anomotaenia sientorea (FRÖLICH) 
Anomotaenia arionis (V. SIEBOLD). 
Choanotaenia paradoxa (RuD.) 
Choanotaenia stellifera (KRABBE) 


Die Cestoden der Vögel. ‚ Lahr 


Monopylidium einguliferum (KRABBE) 
Hıymenolepis (Echinocotyle) uralensis CLERC 
Aploparaksis filum (GOEZE) 

Aploparaksis crassirostris (KRABBE). 


Pavoncella pugnax (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Zentral-Europa, Asien; im 
Winter Afrika, Indien. 


Anomotaenia globulus (WEDL.) 
Anomotaenia microrhyncha (KRABBE) 
Monopylidium einguliferum (KRABBE) 
Hymenolepis brachycephala (ÖREPL.) 
Aploparaksis filum (GOEZE) 
Aploparaksıs crassirostris (KRABBE). 


Bartramia longicauda (BECHST.). 
Geographische Verbreitung: Nordamerika; im Winter 
Südamerika. 


Anomotaenia nymphaea (SCHRANK). 


Calidris arenaria (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Kosmopolit. 


Ophryocotyle proteus FRIIS 
Trichocephaloides megalocephala (KRABBE) 
Aploparaksis brachyphallos (KRABBE). 


Limonites temmnicki (LEıst.). 
Geographische Verbreitung: Nord-Europa und Sibirien; 
im Winter Nord-Afrika, Indien, Ceylon. 


Hymenolepis amphitricha (Run.) 
Hymenolepis (Echinoeotyle) mitida (KRABBE) 
Aploparaksis erassirostris (KRABBE). 


Limonites minuta (LeısL.). 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Sibirien; im 
Winter Afrika, Indien, Ceylon. 
Dilepis recapta CLERC 


Triehocephaloides birostrata CLERC 
Aploparaksis filum (GOEZE). 


118 O0. FuHrmann. 


Limonites damacensis (HoRsr.). 


Geographische Verbreitung: Sibirien, Alaska; im Winter 
Japan, China, Malayische Inseln, Australien. 


Anomotaenia clavigera (KRABBE) 
Anomotaenia microphallos (KRABBE) 
Anomotaenia plaiyrhyncha (KRABBE) 
Dilepis nymphoides CLERC 
Monopylidium cinguliferum (KRABBE) 
Triehocephalus megalocephala (KBABBE) 
Hıymenolepis penetrans CLERC 
Hymenolepis (Echinocotyle) nitida (KRABBE) 
Hymenolepis vallei (STOSSICH) 
Aploparaksis filum (GOEZE) 
Aploparaksis crassirostris (KRABBE) 
Aploparaksis brachyphallos (KRABBE) 

? Copesoma papillosum SINITZINE. 


Arquatella maritima (G1M.). 


Geographische Verbreitung: Arktisches Europa, Nordost- 
Asien, Nordost-Amerika; im Winter gemäßigtes Europa und Nord- 
amerika. 


Trichocephaloides megalocephala (KRABBE) 
Hymenolepis amphitricha (RUD.) 
Hymenolepis (Eehinocotyle) mitida (KRABBE) 
Aploparaksis brachyphallos (KRABBE) 
Taenia megalorhyncha KRABBE. 


Ancylochilus subarquatus (GULD.). 
Geographische Verbreitung: Arktische Region im 
Winter Afrika, Indien, Australien. 


Ophryocotyle proteus FRIIS 

Anomolaenia stentorea (FRÖLICH) 
COhoanotaenia paradoxa (RuD.) 
Trichocephaloides megalocephala (KRABBE). 


Pelidna alpina (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Nord-Asien; 
im Winter Mittelmeerländer, Indischer Ozean. 


Ophryocotyle proteus FRIIS 
Anomotaenia stentorea (FRÖLICH) 


Die Cestoden der Vögel. 119 


Anomotaenia clavigera (KRABBE) 
Anomotaenia eingulata (v. LINSTOW) 
Dilepis retirostris (KRABBE) 
Trichocephaloides megalocephala (KRABBE) 
Hymenolepis amphitricha (RuD.) 
Hymenolepis brachyphallos (KRABBE) 
Hymenolopis (Ecehinocotyle) nitida (KRABBE) 
Hymenolopis (Echinocotyle) nitidulans (KRABBE) 
Aploparaksis filum (GOEZE) 

Aploparaksis crassirostris (KRABBE) 

Taenia tetrabothrioides LÖNNBERG. 


Tringa totanus?.') 
Fundort: Nord-Deutschland. 


Davainea minuta COoHN 
Fuhrmannia alternans (COHN). 


Tringa canutus Lixs. 


Geographische Verbreitung: Arktische Region ; im Winter 
Afrika, Indien, Südamerika, Australien. 


Anomotaenia clavigera (KRABBE) 
Aploparaksis brachyphallos (KRABBE). 


Tringa macrura (?). 
Fundort: Brasilien. 


Dilepis retirostris (KRABBE). 


Tringa sp. 
Fundort: Ägypten. 


Hymenolepis brachycephala (CREPLIN). 


Tringa sp. 
Fundort: Brasilien. 


Monopylidium cinguliferum (KRABBE). 


1) Diesen von CoHN gegebenen Wirtsnamen konnte ich nicht auf- 
finden. 


120 O. Fuurmann, 


Tringa sp. 
Fundort: Brasilien. 


Acoleus cerassus FUHRMANN. 


Gallinago gallinago (Lisz.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien; im 
Winter Nordost-Afrika, Indien, Malayische Inseln. 


Anomotaenia stentorea (FRÖLICH) 
Anomotaenia citrus (KRABBE) 
Anomotaenia bacilligera (KRABBE) 
Anomotaenia aegyptica (KRABBE) 
Anomotaenia slesvicensis (KRABBE) 
Choanotaenia paradoxa (RUD.) 
Choanotaenia embryo (KRABBE) 
Hymenolepis sphaerophora (RuD.) 
Hymenolepis (Echinocotyle) nitida (KRABBE) 
Aploparaksis fillum (GOEZE) 
Aploparaksis crassirostris (KRABBE) 
Apleparaksis penetrans (CLERC). 


Gallinago major (G1.). 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa; im Winter 
Mittelmeerländer, Afrika. 


Aploparaksis filum (GOEZE). 


Gallinago undulata (Bon».). 


Geographische Verbreitung: Guyana. 


Anomotaenia bacılligera (KRABBE) 
Choanotaenia embryo (KRABBE) 
Choanotaenia intermedia FUHRMANN. 


Gallinago gigantea TEemm. 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Paraguay. 


Anomotaenia bacilligera (KRABBE) 
Ohoanotaenia intermedia FUHRMANN 
Shipleya inermis FUHRMANN. 


Die Cestoden der Vögel. 121 


Limnoeryptus gallinula (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Sibirien; im 
Winter Indien, China, Formosa. 
Anomotaenia globulus (WEDL) 
Anomotaenia ceitrus (KRABBE) 
Anomotaenia bacilligera (KRABBE) 
Choanotaenia paradoxa (RuD.) 
Ohoanotaenia embryo (KRABBE) 
Hymenolepis interrupta (RuD.) 
Hymenolepis uliginosa (KRABBE) 
Aploparaksis filum (GOEZE) 
Aploparaksis crassirostris (KRABBE) 
Aploparaksis hirsuta (KRABBE) 
Taenia fresiana KRABBE. 


Rostratula capensis (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Afrika, Indien, Ceylon, 
China, Japan, Sumatra. 


Hymenolepis spinosa v. LINSTOW. 


Philohela minor (GM.). 
Geographische Verbreitung: Nordamerika. 


Anomotaenia stentorea (FRÖLICH). 


Crymophilus fulicarius (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Arktische Zone; im Winter 
Süden, den 50.° n. Br. nicht überschreitend. 


Aploparaksıs diminuens v. LINST. 


Scolopax rusticola Linn.. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien; im 
Winter Süd-Europa, Indien, China. 


Anomotaenta slesvicensis (KRABBE) 
Anomotaenia bacilligera (KRABBE) 
Anomotaenia aegyptica (KRABBE) 
Choanotaenia paradoxa (RuD.) 
Choanotaenia embryo (KRABBE) 
O'hoanotaenia stellifera (KRABBE) 
Hymenolepis interrupta (RuD.) 


122 O. FuHrMmann. 


Hymenolepis sphaerophora (RuD.) 
Hymenolepis amphitricha (KRABBE) 
Aploparaksis filum (GOEZE) 
Aploparaksis crassirostris (KRABBE) 
Aploparaksis hirsuta (KRABBE). 


Scolopax paludo ? 


Fundort: Brasilien. 


Anomotaenia bacilligera (KRABBE) 
CUhoanotaenia embryo (KRABBE) 
Ohoanotaenia intermedia FUHRMANN. 


Phalaropus hyperboreus (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Arktische Region beider 
Hemisphären. 


Ohoanotaenia paradoxa (RuD.) 
Hymenolepis minuta (KRABBE) 
Aploparaksis füilum (GOEZE) 
Aploparaksis crassirostris (KRABBE). 
Cursorius gallicus (GM.). 
Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer, Arabien, 
Persien, Nordwest-Indien. 
Anomotaenia aegyptica (KRABBE) 
Taenia nelotica KRABBE. 
Glareola pratincola (LinN.). 


Geographische Verbreitung: Süd-Europa bis Zentral- 
Asien; im Winter Afrika, Indien. 


Anomotaenia nymphaea (SCHRANK) 
Hymenolepis longirostris (RuD.) 
Taenia eryptacantha KRABBE. 
Oedienemus oedienemus (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Zentral-Asien; im Winter Nordost-Afrika, Indien. 


Choanotaenia coronata (CREPLIN). 


Die Cestoden der Vögel. 123 


Lariformes. 


Tetrabothrius ceylindraceus RuD. 
Tetrabothrius erostris (LÖNNBERG) 
Ophryocotyle proteus FRILS 
Anomotaenia tordae (FABRICIUS) 
Anomotaenia campylacantha (KRABBE) 
Anomotaenia socialis (KRABBE) 
Anomotaenia larina (KRABBE) 
Anomotaenia micracantha (KRABBE) 
O'hoanotaenia porosa (RUD.) 
Choanotaenia inversa (RuD.) 
Choanotaenia sternina (KRABBE) 
Choanotaenia dodecantha (KRABBE) 
C'hoanotaenia gonygla COoHN 
COhoanotaenia rhynchopis FUHRMANN 
Dilepis? cylindrica (CLERC) 

Taenia diaphana FUHRMANN 
Hymenolepis fusus (KRABBE) 
Hymenolepis baschkiriensis OLERC 
Hymenolepis octacanthoides FUHRMANN (ÜOHN) 
? Hymenolepis mierosoma (CREPLIN) 
Aploparaksıs cirrosa (KRABBE) 
Taenia distineta LÖNNBERG. 


Laridae. 


Hydrochelidon nigra (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien; im 
Winter Afrika. 


C'hoanotaenia inversa RUD. 


Sterna bergii Licht. 


Geographische Verbreitung: Auf beiden Seiten von Süd- 
Afrika, Rotes und Arabisches Meer, Indischer Ozean, Chinameer bis 
Japan, Australien, Polynesien bis Hawayischer Archipel. 


Tetrabothreus erostris LÖNNBERG. 


Sterna masxima BoDD. 


Geographische Verbreitung: Nordamerika bis Brasilien, 
Antillen, West-Afrika. 


Tetrabothrius cylindraceus RuD. 


124 OÖ. FUHRMANN, 


Sterna macrura NAuM. 


Geographische Verbreitung: Circumpolar; im Winter 
Küsten von Brasilien und Afrika. 
Tetrabothrius erostris (LÖNNBERG) 


Uhoanotaenia inversa (RUD.) 
Choanolaenia sternina (KRABBE). 


Sterna fluviatilis NAUM. 


Geographische Verbreitung: Nordamerika, Europa, Asien; 
im Winter Afrika, Indien, Brasilien. 
Tetrabothrius erostris (LÖNNBERG) 
Ohoanotaenia porosa (RUD.) 
Choanotaenia sternia (KRABBE) 
Aploparaksis cirrosa (KRABBE). 


Sterna sp. 
Fundort: Brasilien. 


Tetrabothrius eylindraceus RUD. 


Larus ridibundus Lin. 


Geographische Verbreitung: Norwegen, Schweden, Ruß- 
land, Nord-Asien; im Winter Nord-Afrika, Indien, China, Philippinen. 


Tetrabothrius cylindraceus RUD. 

Anomotaenia micracantha (KRABBE) 
CUhoanotaenia porosa (RuD.) 

Choanotaenia gongyla COHN 

Hymenolepis fusus (KRABBE) 

Hymenolepis octacanthoides FUHRMANN (COHN) 
Aploparaksis eirrosa (KRABBE). 


Larus argentatus GM. 
Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Nordost- 
Amerika; im Winter Mittelmeerländer. 
Tetrabothrius eylindraceus RuD. 


Tetrabothrius erostris (LÖNNBERG) 
Choanotaenia porosa (RUD.). 


Die Cestoden der Vögel. 125 


Larus eanus Lisn. 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Nord-Asien; 
Mittelmeerländer, Japan, China. 


Tetrabothrius eylindraceus RuD. 
Tetrabothrius erostris (LÖNNBERG) 
Ophryocotyle proteus FRIIS 
Anomotaenia micracantha (KRABBE) 
Choanotaenia porosa (RuD.) 
Choanotaenia sternina (KRABBE) 
Dilepis? ceylindrica (CLERC) 
Hymenolepis baschkiriensis CLERC 
Aploparaksis eirrosa (KRABBE) 
Taenia distinctua LÖNNBERG. 


Larus glaucus FABr. 


Geographische Verbreitung: Circumpolar; im Winter bis 
Mittelmeer, Kaspisches Meer, Japan, Californien, Mexiko. 
Tetrabothrius eylindraceus RuD. 

Anomotaenia micracantha (KRABBE) 
Anomotaenia larina (KRABBE) 

? Hymenolepis microsoma (ÜREPLIN) !) 
Hymenolepis fusus (KRABBE). 


Larus marinus Linn. 
Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Grönland, 
große Seen Amerikas; im Winter Mittelmeerländer bis Florida. 


Tetrabothrius eylindraceus RuD. 
Tetrabethrius erostris (LÖNNBERG) 
Anomotaenia micracantha (KRABBE) 
Choanotaenia porosa (RUD.) 
Hymenolepis fusus (KRABBE). 


Larus melanocephalus NATH. 
Geographische Verbreitung: Mittelmeer, Schwarzes Meer. 


Tetrabothrius cylindraceus RUD. 
Choanotaenia porosa (RuD.). 


1) Nach KRABBE. 


126 O0. FUHRMANN, 


Larus minutus PALLAS. 


Geographische Verbreitung: Subarktisches Europa bis 
Asien; im Winter Mittelmeerländer. 


Choanotaenia porosa RUD. 
Choanotaenia dodecantha (KRABBE) 
Aploparaksis eirrosa (KRABBE). 


Larus fuscus Linn. 


Geographische Verbreitung: West-Europa; im Winter 
West-Afrika. 


Tetrabothrius cylindraceus RuD. 
Tetrabothrius erostris (LÖNNBERG) 
Choanotaenia porosa (RuD.) 
Anomotaenia micracantha (KRABBE). 


Larus tridactylus L. 


Geographische Verbreitung: Circumpolar; im Winter 
Mittelmeer, Kaspisches Meer, Nordamerika. 


Tetrabothrius cylindraceus RuD. 
Tetrabothrius erostris (LÖNNBERG) 
Anomotaenia larina (KRABBE) 
Anomotaenia micracantha (KRABBE) 
Ohoanotaenia porosa (RUD.). 


Larus ealifornicus LAwR. 
Geographische Verbreitung: Westl. Nordamerika; im 
Winter Mexiko. 


O'hoanotoenia porosa. (RuD.) 
Hymenolepis sp.*) 


Larus atrieilla Linn. 


Geographische Verbreitung: Nordamerika, Antillen, 
Zentral- und Südamerika. 


Tetrabothrius eylindraceus RUD. 


1) Linton 1892 gibt an, T. filum GOEZE gefunden zu haben, was 
wohl nicht zutrifft, es handelt sich wohl um Hymenolepis fusus oder eine 
andere neue Hymenolepis-Art. 


Die Cestoden der Vögel. 19% 


Larus hemprichi (Bruch.). 


Geographische Verbreitung: Rotes Meer, Ost-Afrika 
Küsten des Indischen Ozeans. 


’ 


Tetrabothrius cylindraceus RuD. 


Larus cachinurus PALL. 


Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer, Schwarzes 
Meer, Kaspisches Meer, Baikalsee. Im Winter: Indien, Persien, Rotes 
Meer, West-Afrika. 


Choanotaenia porosa (RUD.). 


Xema sabinii (SABINE). 


Geographische Verbreitung: Arktisches Amerika und 
Ost-Sibirien, im Winter bis Peru. 


Tetrabothrius cylindraceus RuD. 


Pagophila eburnea (PHoprs.). 


Geographische Verbreitung: Circumpolar; im Winter 
West-Europa und östl. Nordamerika. 


Anomotaenia miceracantha KRABBE. 


Iohynchops intercedens SAUNDERS. 


Geographische Verbreitung: Küste von Südamerika und 
Argentinien. 


C'hoanotaenia rhynchopis FUHRMANN 
Taenia diaphana FUHRMANN. 


Aleidae. 


Alca torda Lin. 


Geographische Verbreitung: Nord-Atlantisches Meer, 
Mittelmeer. 


Anomotaenia tordae (FABRICIUS). 


128 OÖ. FUHRMANN, 


Cepphus grylle (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Nord-Atlantischer Ozean; 
im Winter West-Europa, östl. Nordamerika. 


Anomotaenia campylacantha (KRABBE) 
Anomotaenia micracantha (KRABBE). 


Uria troile (Linn.). 


r 


Geographische Verbreitung: Nord-Atlantischer Ozean; 
im Winter Mittelmeer. 
Tetrabothrius cylindraceus (RuD.) 


Anomotaenia socialis (KRABBE) 
Anomotaenia tordae (FABRICIUS) RUD. 


Columbiformes. 


Pteroclites. 


Cotugnia inaequalis FUHRMANN 
Taenia obvelata KRABBE. 


Pteroclidurus alchatus (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Palästina bis Zentral-Asien 
und Nordwest-Indien. 


Taenia obvelata KRABBE. 


Pteroclis coronatus LICHT. 


Geographische Verbreitung: Nordost-Afrika, Nordwest- 
Indien. 


Cotugnia inaequalis FUHRMANN. 


Columbae. 


Bertia delafondi (RAILLIET) 
Oittotaenia kuvaria (SHIPLEY) 
Moniexia columba FUHRMANN 
Davainea erassula (RUDOLPHI) 
Davainea insignis (STEUDENER) 
Davainea columbae FUHRMANN 
Davainea miceracantha FUHRMANN , 
Davainea ceryptacantha FUHRMANN 


Die Cestoden der Vögel. 129 


Davainea goura FUHRMANN 
Davainea paueitesticulata FUHRMANN 
Cotugnia polyacantha FUHRMANN 
Dipylidium columbae FUHRMANN 
Hymenolepis sphenocephala (RuD.) 
Hymenolepis serrata FUHRMANN 
Hhymenolepis armata FUHRMANN 
Hymenolepis rugosa ÖLERC. 


Ptilonopus sp. 
Fundort: Sumatra. 


Moniezia columbae FUHRMANN. 


Globicera oceanica (LESSON). 
Geographische Verbreitung: Carolinen und Palau-Inseln. 


Davainea insignis STEUDENER. 


Carpophaga vanycki Cass. 
Geographische Verbreitung: Bismarck-Archipel. 


Cittotaenia kuvaria (SHIPLEY). 


Columba livia Bosn. 
Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer, Zentral- 
Asien, Turkestan, China. 


Bertia delafondi (RAILLIET) 
Davainea crassula (RUD.) 
Hymenolepis rugosa CLERC. 


Columba Tlivia Bon. dom. 


Bertia delafondi (RAILLIET) 
Davainea crassula (RuD.) 
Hymenolepis sphenocephala (RuD.). 


Columba palumbus Liss. 
Geographische Verbreitung: Europa bis Persien, Azoren, 
Madeira. 


Davainea columbae FUHRMANN. 
Zool. Jahrb., Supplement X. 9 


130 OÖ. FUHRMANN, 


Ectopistes migratorius (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Östliches Nordamerika. 


Bertia delafondi (RAILLIET). 


Columba gymnophthalma Tenum. 


Geographische Verbreitung: Curaco, Aruba; Küste von 
Venezuela. 


Bertia delafondı (RAILLIET) 
Hymenolepis armata FUHRMANN. 
Turtur turtur (Lisz.). 
Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien. 


Bertia delafondi (RAILLIET) 
Davarnea crassula (RUD.) 
Davainea micracantha FUHRMANN 
Ootugnia polyacantha FUHRMANN 
Hlymenolepis serrata FUHRMANN. 


Turtur senegalensis (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Afrika, Palästina, Cana- 
rische Inseln. 


Cotugnia polyacanlha FUHRMANN. 


Goura albertisi SALVAD. 
Geographische Verbreitung: Neuguinea. 


Davainea goura FUHRMANN. 


Caloenas nicobarica (Lisn.). 


seographische Verbreitung: Nicobaren bis Malayischer 
Archipel, Neuguinea, Molukken, Bismarck-Archipel. 


Davainea paueitestieulata FUHRMANN. 


Turtur decipiens (FınscH et HArTL.). 
Geographische Verbreitung: Dongola. 


Davarnea eryplacantha FUHRMANN 
Cotugnia polyacantha FUHRMANN. 


Die Cestoden der Vögel. 131 


Columba sp. 
Fundort: Ägypten. 


Davarnea ceryptacantha FUHRMANN. 


Columba sp. 
Fundort: Ägypten. 


Davarnea eryptacantha FUHRMANN. 


Columba sp. 
Fundort: Ägypten. 


Davainea eryptacantha FUHRMANN. 


Columba sp. 
Fundort: Ägypten. 


Dipylidium columbae FUHRMANN. 


Podieipediformes. 


Tetrabothrius macrocephalus RuD. 
Choanotaenia bilateralis FUHRMANN 
Hımenolepis rostellata (ABILDG.) 
Hymenolepis multistriata (RUD.) 
Hımenolepis capillarıs (RuD.) 
Hymenolepis furcifera (K.RABBE) 
Hymenolepis podieipina SZYMANSKI 
Hymenolepis capillaroides FUHRMANN 
Dioieocestus asper (MEHLIS) 
Dioicocestus acotwlus FUHRMANN 
Dioieocestus (?) novae-hollandiae (KREFFT) 
Schrstotaenia macrorhyneha (RuD.) 
Tatria acanthorhyneha (WEDL) 

Tatria biremis KOWALEWSKY 

Tatria appendieulata FUHRMANN 
Taenia paradoxa KREFFT. 


Colymbus arcticus Linn. 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Nord-Asien; 
im Winter Mittelmeerländer, Kaspisches und Schwarzes Meer. 


Tetrabothrius macrocephalus RuD. 
Hymenolepis rostellala (ABILDG.) 
Hymenolepis capillaris (RuD.). 
9* 


132 OÖ. FuHRMann, 


Colymbus glacialis Linn. 


Geographische Verbreitung: Arktisches Nordamerika, 
Nordost-Asien, Nordwest-Europa; im Winter Kalifornien, Mittelmeer- 
länder. 

Tetrabothrius macrocephalus RUD. 


Hymenolepis rostellata (ABILD.) 
Hymenolepis capillarıs (RuD.). 


Colymbus septentrionalis Linn. 


Geographische Verbreitung: Circumpolar; im Winter 
Mittelmeerländer, China, Kalifornien, Florida. 
Tetrabothrius macrocephalus RuD. 


Hymenolepis rostellata (ABILDG.) 
Hymenolepis capıllarıs (RuD.). 


Proctopus nigricollis (BREHM). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Zentral-Asien, China, Japan; im Winter Afrika. 


Hymenolepis capillaris (RuD.) 
Hymenolepis multistriata (RuD.) 
Tatria biremis Kow. 

Tatria acanthorhyncha (WEDL) 
Schistotaenia macrorhyncha (RuD.). 


Dytes auritus (Lınn.). 


Geographische Verbreitung: Arktische Region; im Winter 
Mittelmeerländer, China, Japan, Vereinigte Staaten. 


Tetrabothrius macrocephalus RuD. 
Hnymenolepis capillaris (RuD.) 
Hymenolepis furcigera (KRABBE) 
Hymenolepis podieipina SZYMANSKI 
Schistotaenia macrorhyncha RUD. 
Tatria biremis KOWAL. 


Lophaethyia cristata (Lis®.). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Nord-Asien, Japan, Afrika, Australien. 
Tetrabothrius maerocephalus RUD. 
Hymenolepis capillarıs (RuD.) 
Hymenolepis furcifera (KRABBE) 


Die Cestoden der Vögel. 153 


Dioicocestus aspera (MEHLIS) 
Taenia novae-hollandiae KREFFT 
Taenia paradoxa KREFFT. 


Lophaethyia griscigena (BoD».). 


Geographische Verbreitung: Europa, West-Asien, Mittel- 
meerländer. 


Hymenolepis capillarıs (RUD.) 
Hymenolepis multistriata (RuD.) 
Hymenolepis furcifera (KRABBE) 
Dioicocestus asper (MEHLIS). 


Podiceps fluviatilis (TUNSTALL). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Zentral-Asien bis Japan. 


Hymenolepis multistriata (RuD.) 
Hymenolepis furciferd (KRABBE) 
Schistotaenia macrorhyncha (RuD.) 
Tatria acanthorhyncha (WEDL). 


Podiceps dominicus (LinN.). 


Geographische Verbreitung: Zentralamerika, Südamerika, 
Große Antillen. 


Choanotaenia bilateralis FUHRMANN 
Hymenolepis capillaroides FUHRMANN 
Dioicocestus acotylus FUHRMANN. 
Schistotaenia macrorhyncha (RuD.) 
Tatrıa appendieulata FUHRMANN 


Procellariiformes. 


Tetrabothrius heteroclitus DIES. 
Tetrabothrius toruwlosus v. LINSTOW 
Tetrabothrius campanulatus FUHRMANN 
Tetrabothrius monticelli FUHRMANN 
Tetrabothrius intermedius FUHRMANN 
Tetrabothrius diomedeae FUHRMANN 
Tetrabothrius umbrella FUHRMANN 
Tetrabothrius sp. 


Procellaria sp. 
Eundort: 2 


Tetrabothrius campanulatus FUHRMANN 
Tetrabothrius intermedius FUHRMANN. 


134 O. Fuhrmann, 


Priocella glacialoides SMITH. 
Geographische Verbreitung: Südliche Meere. 


Tetrabothrius heteroclitus DIES. 


Fulmarus glacialis (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Nord-atlantisches Meer. 


Tetrabothrius monticelli FUHRMANN. 


Daption capensis (Lisn.). 
Geographische Verbreitung: Südliche Meere. 


Tetrabothrius heterochtus DIES. 


Diomedea exulans Linn. 
Geographische Verbreitung: Südliche Meere. 


Tetrabothrius heterochtus DIES. 
Tetrabothrius umbrella FUHRMANN 
Tetrabothrius diomedeae FUHRMANN. 


Diomedea albatrus PALL. 
Geographische Verbreitung: Nordpazifischer Ozean. 


Tetrabothrius toruwlosus V. LINSTOW 
Tetrabothrius heteroclitus DIES. 


Diomedea sp. 
Enndort: 


Tetrabothrius umbrella FUHRMANN. 


Diomedea swinhoi?. 
Fundort: ?. 


Tetrabothrius diomedeae FUHRMANN. 


Diomedea sp. 
Fundort: Kamtschatka. 


Tetrabothrius heteroclitus v. LINST. 


Die Cestoden der Vögel. 138 


Diomedea sp. 
Fundort: Kamtschatka. 


Tetrabothrius torulosus V. LINSTOW. 


Tnhalassogeron chlororhynchus (GM.). 
Geographische Verbreitung: Südliche Meere. 
Tetrabothrius diomedea FUHRMANN. 


Phoebetia fuliginosa (GM.). 
Geographische Verbreitung: Südliche Meere. 
Tetrabothrius umbrella FUHRMANN. 


Puffinus kuhli Bo1E. 
Geographische Verbreitung: Mittelmeer, Atlantischer 
Ozean, von Madeira bis zu den Kanarischen Inseln. 
Tetrabothrius heteroclitus DIES. 


Puffinus anglorum Baıss. 
Geographische Verbreitung: Atlantischer Ozean, von 
Island bis Brasilien. 
Tetrabothrius heterochtus DIES. 


Aptenodytiformes. 


Tetrabothrius eudyptides (LÖNNBERG) FUHRMANN 
Tetrabothrius lutzi PARONA 

Taenia diaphoracantha FUHRMANN 

Taenia xederi BAIRD. 


Spheniscus magellanicus (FORSTER). 
Geographische Verbreitung: Küste von Süd-Brasilien bis 
Magellan. 
Tetrabothrius lutzi PARONA. 


Catarrhactes chrysocome FORSTER. 
Geographische Verbreitung: Südl. Südamerika, Australien, 
Kap der guten Hoffnung. 


Tetrabothrius eudyptides (LÖNNBERG) FUHRMANN 
Taenia diaphoracantha FUHRMANN. 


136 OÖ. FuUHRMARN, 


Aptenodytes sp. 
Fundort: 


Taenia xederi BAIRD. 


Steganopodes. 
Tetrabothrius pelecani Run. 
Dilepis scolecina (RuD.) 
Hymenolepis medici (STOSSICH). 
Sula sula (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Tropische und subtropische 
Meere. 


Tetrabothrius pelecanı RuD. 
Sula sp. 
Fundort:?. 


Tetrabothrius pelecani RuD. 


Sula bassana Lönn. 
Geographische Verbreitung: Atlantischer Ozean. 


Tetrabothrius sp. 


Phalaerocorax carbo (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Atlantische Küsten von Nord- 
amerika, Europa, Nord-Asien, Mittelmeer, Australien. 


Dilepis scolecina (RunD.). 


Fregata aquwila (Linx.). 


Geographische Verbreitung: Tropische und subtropische 
Meere. 


Tetrabothrius pelecani (RuD.)? 


Pelecanus onocrotalus GM. 


Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Afrika, Nord- 
west-Indien. 


Hymenolepis medici (STOSSICH). 


Die Cestoden der Vögel. 137 


Plecanus sp. 
Eundort: 2. 


Hymenolepis mediei (STOSSICH). 


Ciconiiformes. 


Tetrabothrius porrigens MOLIN 
Davainea circumeincta (KRABBE) 
Anomotaenia aurita (RuD.) 
Anomotaenia discoidea (VAN BEN.) 
Anomotaenia glandularıs FUHRMANN 
Dilepis campylaneristrota (WEDL) 
Dilepis urceus (WEDL) 

Dilepis transfuga (KRABBE) 

Dilepis papillifera FUHRMANN 
Dilepis bieoronata FUHRMANN 
Dilepis cerassirostrata FUHRMANN 
Dilepis hoplites (v. LINSTOW) 
Dilepis? nasuta FUHRMANN 
Proorchida lobata FUHRMANN 
Uyclorehida omalaneristrota (WEDL) 
Acanthoeirrus macropeus (WEDL) 
Acanthocirrus cheilaneristrota (WEDL) 
Oyclustera capito (RuD.) 

Uyelustera fuhrmanni UCLERC 
Lateriporus spinosus FUHRMANN 

? Anonchotaenia longiovata FUHRMANN 
Hymenolepis unilateralis (RuD.) 
Hymenolepis mierocephala (RuD.) 
Hymenolepis filirostris (WEDL) 
Hymenolepis breviannulata FUHRMANN 
Hymenolepis elongata FUHRMANN 
Hymenolepis leptoptili (v. LINSToWw) 
Dioieocestus paronai FUHRMANN 
Tetracisdicotyla macroscolecina FUHRMANN 
Taenia papilla WEDL 

Taenia brevirosiris WEDL 

Taenia leuckarti KRABBE. 


Ibis melanocephala (LATH.). 


Geographische Verbreitung: Indien, China, Süd-Japan, 
Java. 


Hymenolepis filirostris (WEDL.). 


138 0. FuHrmann, 


Theristicus melanopsis (GM.). 
Geographische Verbreitung: Südamerika. 


Dilepis ? nasuta FUHRMANN. 


Molypdophanes coerulescens \VIEILL. 


Geographische Verbreitung: Zentral-Brasilien, Paraguay, 
Argentinien. 


Dilepis urceus (WEDL) 
Hymenolepis breviannulata FUHRMANN 
Hymenolepis elongata FUHRMANN. 


Harpiprion cayennensis (GM.). 
Geographische Verbreitung: Panama bis Süd-Brasilien, 


Dilepis bicoronata FUHRMANN. 


Plegadis falcinellus (Lisn.). 
Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Mittelmeer- 
länder, Süd-Asien, Celebes, Afrika, östl. Nordamerika, Australien, 
Jamaika. 


Dilepis urceus (WEDL) 
Hymenolepis mierocephala RuD. 


Plegadis quarauna (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Vereinigte Staaten, Mexiko, 
Südamerika, Große Antillen. 


(?) Anonchotaenia longiovata FUHRMANN 
Dioicocestus paronat FUHRMANN. 


Platalea leucorodia (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Zentral-Asien, Indien, China, Japan, Ost-Afrika. 


Dilepis urceus (WEDL) 

Oyclorchida omalaneristrota (WEDL) 
Oyclustera capito (RuD.) 
Hymenolepis filirostris (WEDL). 


Die Cestoden der Vögel. 139 


Ajaja ajaja (Linx.). 


Geographische Verbreitung: Vereinigte Staaten, Zentral- 
und Südamerika bis Argentinien. 


Dilepis transfuga (KRABBE). 


Tantalus sp. 
Fundort: Brasilien. 


Dilepis bicoronata FUHRMANN. 


Abdimia abdimia. 


Geographische Verbreitung: Tropisches Afrika, Arabien, 
Spanien. 


Hymenolepis mierocephala (RUD.). 


Ciconia eiconia (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien; im 
Winter Afrika, Nord-Indien. 


Hımenolepis microcephala (RuD.) 
Anomotaenia discoidea (VAN BEN.). 


Leptoptilus erumeniferus (Less.). 
Geographische Verbreitung: Tropisches Afrika. 


Hymenolepis leptoptili (v. LINSTow). 


Tigrisoma brasiliense (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia, Peru, 
Ecuador, Columbia, Trinidad. 


Dilepis erassirostrata FUHRMANN. 


Pyrrherodias purpurea (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Zentral-Asien, Afrika, Madagaskar. 
Acanthoeirrus macropeus (WEDL) 


Hiymenolepis mierocephala (Run.) 
Taenia papilla WEDL. 


140 O0. FuUHRMANN, 


Ardea cinerea Linn. 
Geographische Verbreitung: Europa, Asien, Afrika, 
Australien. 


Dilepis campylaneristrota (WEDL) 
Acanthoeirrus cheilaneristrota (WEDL) 
Hymenolepis microcephala (RuD.) 
Taenıa leuckarti KRABBE. 


Ardea sp. 
Eundort:=r, 
Taenia leuckarti KRABBE. 
Ardea sp. 
Fundort: Brasilien. 
Anomotaenia aurita (RUD.). 
Ardea sp. 
Fundort: Sibirien. 
Dilepis hoplites (v. LINSTOW). 


Florida caerulea (Lisn.). 
Geographische Verbreitung: Vereinigte Staaten, Zentral- 
amerika, Antillen, Brasilien. 
Anomolaenia aurita (RuD.) 
Dilepis papillifera FUHRMANN. 
Herodias egretta (WıLs.). 
Geographische Verbreitung: Nord-, Zentral- und Süd- 
amerika. 
Dilepis unilateralis (RuD.) 


Herodias timoriensis Cuvc. 


Geographische Verbreitung: Japan und Nord-China, 
Malayischer Archipel bis Australien. 


Anomotaenia glandularıs FUHRMANN. 


Garzetta garzetta Lin. 


Geographische Verbreitung: Süd-Europa, China, Japan, 
Afrika, Indien. 


Davainea circumeincta (KRABBE). 


Die Cestoden der Vögel. 141 


Nyeticorax nyeticorax (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Süd- und Zentral-Europa, 
Indien, Japan, China, Afrika, Nord- und Zentralamerika, Antillen. 


Tetrabothrius porrigens MOLIN 
Acanthoeirrus macropeus (WEDL) 
Hymenolepis microcephala (RuD.). 
Caneroma cochlearis Lin. 


Geographische Verbreitung: Columbia, Süd-Brasilien, 
(zuyana. 


Proorchida lobata FUHRMANN 
Lateriporus spinosus FUHRMANN. 
Butorides striata Lisn.? 
Geographische Verbreitung: Südamerika. 


Hymenolepis unilateralis (RuD.). 


Butorides virescens (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Nord- und Zentralamerika, 
Antillen. 


Hymenolepis unilateralis (RuD.) 
Tetracisdicotyla macroscolecina FUHRMANN. 
Botaurus stellaris Lisn. 
Geographische Verbreitung: Paläarktische Region. 
Oyelustera fuhrmanni ÖLERC 
Taenia brevirostris WEDL. 
Phoeniecopteri. 


Leptotaenia ischnorhyncha (LÜHE) 
Hymenolepis liguloides (GERV.) 
Hymenolepis caroli (PARONA) 
Hymenolepis megalorchis (LÜHE) 
Amabilia lamelligera (OWEN). 


Phoenicopterus roseus PALL. 


Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer, Zentral- 
Asien, Afrika, Indien, Ceylon. 


142 OÖ. FUHRMANN, 


Leptotaenia ischnorhyncha (LÜHE) 
Hymenolepis liquloides (GERV.) 
Hymenolepis caroli (PARONA) 
Hıymenolepis megalorchis (LÜHE) 
Amabilia lamelligera (OWEN). 


Acecipitres. 
Tetrabothrius junceus BAIRD 
Mesocestoides perlatus (GOEZE) 
Davainea sphaeroides CLERC 
Davainea hertwigi MOLA 
Idiogenes flagellum (GOEZE) 
Anomotaenia mollis (VOLZ) 
Anomotaenia trapexoides FUHRMANN 
Dilepis oligorchida FUHRMANN 
Laterotaenia nattereri FUHRMANN 
Dipylidium avicola FUHRMANN 
Ouleitella erassa FUHRMANN 
Ouleitella rapacicola FUHRMANN 
Taemia eylindracea BLOCH 
Taenia heteracantha FUHRMANN 
Oligorchis strangulatus FUHRMANN 
Taenıa viator LEIDY. 


Gypagus papa (Lisx.). 

Geographische Verbreitung: Südamerika, Mexiko. 
Tetrabothrius junceus BAIRD 
Laterotaenia nattereri FUHRMANN. 

Polyborus tharus (Mor.). 

Geographische Verbreitung: Südamerika. 

 Aploparaksis filum (GOEZE).) 
Gyps kolbi (Dasxp».). 

Geographische Verbreitung: Süd-Afrika. 


Dipylidium avicola FUHRMANN. 


Circus pygargus (Lisx.). 
Geographische Verbreitung: Europa und Asien; im 
Winter Süd-Afrika, Indien, China. 
Taenia eylindracea BLOCH. 


1) Ist wohl mit der Nahrung in den Darm dieses Vogels gekommen 


(s. 8. 82). 


Die Cestoden der Vögel. 143 


Cireus eyaneus (Linx.). 


Geographische Verbreitung: Nord-Europa und Sibirien; 
im Winter Nordost-Afrika, Nord-Indien, China. 


Mesocestoides perlatus (GOEZE) 
Taenia eylindracea BLOCH. 
Circus aeruginosus (LisN.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Sibirien; im Winter 
Nord-Afrika, Indien, China, Japan. 


Mesocestoides perlatus (GOEZE) 
Taenia ceylindracea BLOCH. 


Aceipiter nisus (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Europa und Zentral-Asien 
bis zum Polarkreis. 


Hymenolepis leptodera (v. LINSTOW). !) 


Circaetus gallicus (GM.). 


Geographische Verbreitung: Ost- und Süd-Europa, Mittel- 
meerländer, Nordost-Afrika, Zentral-Asien. 


Mesocestoides perlatus (GOEZE) 
Taenıa cylindracea BLOCH. 
Haliaetus albieilla (Lixn.). 


Geographische Verbreitung: Grönland, Nord-Europa, 
Nord-Asien; im Winter Nord-Indien, China. 


Taenia cylindracea BLOCH. 


Elanoides furcatus (Liss2.). 
Geographische Verbreitung: Nordamerika; im Winter 
Zentralamerika, Brasilien. 


Oligorchis strangulatus FUHRMANN 
Taenia viator LEIDY. 


1) Ist S. 79 als Synonym von Hym. fringillarum (RuD.) angeführt 
und wird mit der Nahrung in den Darm obigen Raubvogels gelangt sein. 


144 0. FuHnrmann, 


Nisaetus pennata GM. 
Geographische Verbreitung: Süd- und Nordost-Afrika, 
Mittelmeerländer, Südost-Europa, Indien. 
Taenia eylindraces BLOCH 


Nisaetus fasciatus (VIEILL.). 
Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Nordost-Afrika, 
Südwest-Asien, Indien. 
Davainea hertwigi MOLA. 


Milvus milvus (Linn.). 
‘Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa. 


Idiogenes flagellum (GOEZE) 
Mesocestordes perlatus (GOEZE). 


Milvus korschun (GM.). 

Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Zentral-Asien; im Winter Afrika. 
ldiogenes flagellum (GOEZE) 
Mesocestoides perlatus (GOEZE) 
Taenia eylindraceau BLOCH. 

Milvus melanotis T. et S. 

Geographische Verbreitung: Nordost-Asien, ‚Japan, 
Himalaya, Indien. 
Idiogenes flagellum GOEZE. 


Milvwus aegypticus (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Afrika, Mada- 
gaskar. 
Mesocestordes perlatus (GOEZE) 
Taenia heteracantha FUHRMANN. 
Buteo buteo (Linn.). 
Geographische Verbreitung: West-Europa. 
Mesocestordes perlatus (GOEZE) 
Taenia eylindracea BLOCH. 
Buteo menetriesi Bocn. 
Geographische Verbreitung: Ost-Europa. 
Davainea sphaeroides CLERC. 


Die Cestoden der Vögel. 145 


Busarellus nigrieollis (LATH.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Amazonia, Guyana. 


Dilepis oligorchida FUHRMANN. 


Urubutinga urubutinga (GM.). 


Geographische Verbreitung: Zentralamerika, Brasilien, 
Chili, Paraguay. 


Anomotaenia trapexordes FUHRMANN. 


Asturina nitida (LATH.). 
Geographische Verbreitung: Südost-Brasilien, Panama 


Quleitella rapacicola FUHRMANN. 


Aquila chrysaetus (LinN.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien, Nord- 
Amerika. 


Mesocestoides perlatus (GOEZE). 


Aquila heliaca SAVIGN. 


Geographische Verbreitung: Südost-Europa, Zentral- 
Asien, Nord-Indien, China. 


Mesocestoides perlatus (GOEZE). 


Archibuteo lagopus (GM.). 
Geographische Verbreitung: Nord- und Zentral-Europa, 
Sibirien. 


Taenia cylindracea BLOCH. 


Spizaetus ornatus (DanD.). 
Geographische Verbreitung: Zentral- und Südamerika. 


Quleitella erassa FUHRMANN. 


Geranospizias caerulescens (VIEILL.). 
Geographische Verbreitung: Tropisches Südamerika. 


Quleitella rapacicola FUHRMANN. 
Zool. Jahrb., Supplement X. 10 


146 O. FuHrMmann, 


Pernis apivorus (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Europa, Afrika, Madagaskar. 
Taenia cylindracea BLOCH. 
Falco feldegii ScHL. 
Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer, Nordost- 
Afrika. 
Mesocestoides perlatus (GOEZE) 
Taenia cylindracea BLOCH. 
Falco merillus (GERINI). 
Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien, China. 
Taenia eylindracea BLOCH. 


Falco peregrinus Tunst. 
Geographische Verbreitung: Nordhemisphäre; im Winter 
Afrika, Indien. 


Taenia eylindracea BLOCH. 


Falco subbuteo Lixn. 

Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien; im 
Winter Afrika, Indien, China. 
Mesocestoides perlatus (GOEZE) 
Taenia ceylindracea BLOCH. 

Falco minor Be». 

Geographische Verbreitung: Süd- und Nordost-Afrika. 

Anomolaenia mollis (V OLZ). 


Falco nubicus? 
Fundort: Ägypten. 


Taenia eylindracea« BLOCH. 


Cerchneis naumanni (FLEIsch.). 
Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer, Zentral- 
Asien, China; im Winter Afrika, Indien. 


Mesocestoides perlatus (KOEZE) 
Taenia cylindracea BLOCH. 


Die Cestoden der Vögel. 


Cerchneis tinnuneulus (Lixn.). 


147 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien; im 
Winter Nordost-Afrika, Indien, China. 


Mesocestoides perlatus (GOEZE) 
Taenia cylindracea BLOCH. 


Ietinia palumbea Gm. 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Südamerika 


Ouleitella rapacicola FUHRMANN. 


Anseriformes. 


Tetrabothrius arcticus v. LINSTOW 
Oittotaenia avicola FUHRMANN 
Ophryoeotyle sp. 

Davainea anatina FUHRMANN 

? Biuterina longiceps (RuD.) 
Lateriporus teres (KRABBE) 
Lateriporus propeteres FUHRMANN 
Lateriporus biuterinus FUHRMANN 
Choanotaenia borealis (v. LINSTOW) 
Taenia brachysoma SETTL 

Taenia krabbei KOWALEWSKI 


Hymenolepis 
Hymenolepts 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hhıymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 


aequabilis (RUD.) 
fasciata (RuD.) 
tenwirostris (RUD.) 
lanceolata (BLOCH) 
collaris (BATSCH) 
setigera (FRÖLICH) 
gracilis (ZEDER, KRABBE) 
micerosoma (CREPLIN) 
megalops (CREPLIN) 
coronula (DUJARDIN) 
micraneristrota (WEDL) 
creplini (KRABBE) 
analına (KRABBE) 
liophallos (KRABBE) 
fragılıs (KRABBE) 
octacantha (KRABBE) 
fallax (KRABBE) 
groenlandica (KRABBE) 


Hymenolepis pigmentata (v. LINSTOW) 


Hymenolepis 


tenerrima (v. LINSTOW) 


Hymenolepis pachycephala (v. LINSTOW) 


Hymenolepis 


macracanthos (v. LINSTOW) 


148 


Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hıymenolepis 
Hymenolepis 
Hoymenolepıs 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hhıymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 
Hymenolepis 


OÖ. FuUHRrMAnNN, 


sibirica V. LINSTOW 
abortiva v. LINSTOW 
trifolium v. LINSTOW 
bilateralis v. LINSTOW 
retracta v. LINSTOW 
clausa v. LINSTOW 
parvula KOWALEWSKI 
areuata KOWALEWSKI 
compressa (LINTON) 
teresordes FUHRMANN 
orthacantha FUHRMANN 
tritesticulata FUHRMANN 
longivaginata FUHRMANN 
longeeirrosa FUHRMANN 
papillata FUHRMANN 
bisaccata FUHRMANN 
flagellata FUHRMANN 
simplet FUHRMANN 
lobata FUHRMANN 
echinocotyle FUHRMANN 


(Eehinocotyle) rosseteri (BLANCHARD) 


sagitta (ROSSETER) 


Diorchis parviceps V. LINSTOW 
Diorchis acuminata CLERC 


Aploparaksis 
Aploparaksis 


fureigera (RuD.) 
birulas v. LINSTOW 


Diploposthe laevis (BLOCH) 
Diploposthe tuberculata (KREFFT) 
Fimbriaria fasciolarıs (PALLAS) 
Fimbriaria plana v. LINSTOW 
Taenia conica MOLIN 


Taenıa 
Taenia 
Taenia 
Taenia 
Taenia 
Taenia 
Taenia 


moschata KREFFT 
flavescens KREFFT 
cylindrica KREFFT 
pediformis KREFFT 
bairdii KREFFT 
macracantha LINTON 
destituata LÖNNBERG. 


Cygnus olor (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Nord- und Zentral-Europa, 
Zentral-Asien; im Winter Nordwest-Indien, Kaspisches und Mittel- 
meer. 

Hymenolepis ereplini (KRABBE) 
Hıymenolepis aequabilis (Run.). 


Die Cestoden der Vögel. 149 


Cygmus olor dom. 


Hnymenolepis aequabilis (RuD.) 
Hymenolepis setigera (FRÖLICH) 
Hymenolepis anatina (KRABBE). 


Cygnus musicus BECHST. 


Geographische Verbreitung: Arktisches Europa und 
Asien. 


Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 
Hymenolepis aequabilis (RUD.) 
Hymenolepis setigera (FRÖLICH) 
Hymenolepis micranertstrota (WEDL) 
Hymenolepis megalops (NITZSCH). 
Hymenolepis liophallos (KRABBE) 
Hymenolepis creplini (KRABBE) 


Coscoroba coscoroba (Mor.). 
Geographische Verbreitung: Südliches Südamerika. 


Hymenolepis megalops (NITZSCH) 
Hymenolepis orthacantha FUHRMANN. 


Cairina moschata (LiNN.). 


Geographische Verbreitung: Zentralamerika und tropi- 
sches Südamerika. 


Lateriporus biuterina FUHRMANN 
? Biuterina longiceps (RuD.) 
Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 
Hymenolepis megalops (NITZSCH) 
Hymenolepis papillats« FUHRMANN 
Hymenolepis bisaccata FUHRMANN. 


Anser anser (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Westl. paläarktische Region; 
im Winter Europa. 


Hymenolepis fasciata (RuD.) 
Hymenoleprs collaris (BATSCH) 
Hiymenolepis seligera (FRÖLICH) 
Hymenolepis coronula (DUJARDIN) 
Hymenolepis ereplini (KRABBE) 


150 OÖ. FuHRrMAnN, 


Anser ceinereus dom. MEYER. 


Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 
Hymenolepis fasciata (RuUD.) 
Hymenolepis sinuosa (ZEDER) 
Hymenolepis gracilis (ZEDER) 
Hymenolepis tenuirostris (RUD.) 
Taenia krabbei KOWALEWSKI 
Fimbriaria faseiolaris (PALLAS). 


Anser fabalis (LaTn.). 


Geographische Verbreitung: Westpaläarktische Region 
im Winter Zentral- und Süd-Europa. 


Hymenolepis setigera FRÖLICH. 


Anser albifrons (Scor.). 


Geographische Verbreitung: Nordpaläarktische Region; 
Nord-Europa, Sibirien; im Winter Mittelmeer, Caspisches Meer, Nord- 
Indien, China. 


Hymenolepis fasciata (RuD.) 
Hymenolepis ereplini (KRABBE). 


Branta leucopsis (BECHST.). 


Geographische Verbreitung: Arktisches West-Europa; 
im Winter Atlantische Küsten. 


Hymenolepis setigera FRÖLICH 
Hymenolepis longivaginata FUHRMANN. 
Branta bernicla (Lixn.). 


Geographische Verbreitung: Arktische Region; im Winter 
Nord-Europa und Arktisches Amerika. 


Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 
Hymenolepis setigera (FRÖHLICH). 


Branta canadensis (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Nordamerika; im Winter 
Mexiko. 


Diploposthe laevis (BLOCH). 


Die Cestoden der Vögel. 151 


Tadorna tadorna (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Sibirien bis Japan; 
im Winter Süd-Europa, Nord-Afrika, West-Asien, Nord-Indien, Süd- 
China, Japan. 
Hıymenolepis gracilis (ZEDER) 
Hymenolepis coronula (DuJ.) 
Hymenolepis simple FUHRMANN 
Taenia destituata LÖNNBERG. 


Dendrocygna autumnalis (LinN.). 
Geographische Verbreitung: Texas bis Panama. 


Lateriporus biuterinus FUHRMANN. 


Dendrocygna javanica HORsF. 


Geographische Verbreitung: Indien, Ceylon, Malacca, 
Java, Sumatra, Borneo. 


Hymenolepis elausa v. LINSTOW. 


Anas boschas Lisn. 


Geographische Verbreitung: Nordhemisphäre; im Winter 
Nord-Afrika, Arabien, Persien, Indien, China, Japan, Mexico, Zentral- 
Amerika. 

Hymenolepis gracilis (RuD.) 
Hymenolepis collarıs (BATSCH) 
Hymenolepis coronula (Dus.) 
Hymenolepis anatina (KRABBE) 
Hymenolepis octacantha (KRABBE) 
Hymenolepis abortiva v. LINSTOW 
Hymenolepis trifolium v. LINSTOW 
Aploparaksis fureigera (RuD.) 
Diploposthe laevis (BLOCH) 
Fimbriaria faseiolaris (PALLAS) 
Fimbriaria plana v. LINSTOw 
Taenia conica MOoLIN. 


Anas boschas dom. 


Davainea anatina FUHRMANN 
Hymenolepis collaris (BATSCH) 
Hymenolepis graeilis (Run.) 
Hymenolepis tenwirostris (RuD.) 
Hymenolepis anatina (KRABBE) 


152 O0. FUHRMANN, 


Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 

Hymenolepis coronula (DUJARDIN) 

Hhıymenolepis megalops (NITZSCH) 

Hymenolepis parvula KOWALEWSKI 

Hymenolepis (Behinocotyle) rosseteri (BLANCHARD) 
Hymenolepis sagıtta (ROSSETER) 

Taenia brachysoma SETTI 

Diploposthe laevis (BLOCH) 

Fimbriaria fasciolaris (PALLAS) 

Taenia conica MOoLIN. 


Anas obscura GM. 
Geographische Verbreitung: Nordamerika; im Winter 
Bermudas. 


Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 
Diploposthe laevis (BLOCH). 


Anas superciliosa GM. 
Geographische Verbreitung: Sunda-Inseln, Neuguinea, 
Polynesien, Neuseeland, Australien. 


Taenia cylindrica KREFFT 
Taenıa pediformis KREFFT 
Taenia flavesceens KREFFT 
Taenia bairdiü KREFFT 
Fimbriaria fasciolaris (PALL.). 


Anas moschata dom. 


Fimbriaria fasciolaris (PALL.). 


Sareidiornis carunculata ILLiG. 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Argentinien. 


Lateriporus biuterinus FUHRMANN. 


Chenoplax pubatus (SPIX). 
Geographische Verbreitung: Amazonia, Guyana. 


Lateriporus biuterinus FUHRMANN. 


Die Cestoden der Vögel. 15 


© 


Mareca penelope (Lıss.). 


Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter bis Nordost-Afrika, Persien, Nord-Indien, China, Japan; selten 
Nordamerika. 


Hymenolepis gracilis (RuD.) 
Hymenolepis fasciata (RuD.) 
Hymenolepis collaris (BATSCH) 
Hymenolepis coronula (DUJARDIN) 
Hymenolepis fallax (KRABBE) 
Diorchis acuminata CLERC 
Fimbriaria faseiolaris (PALLAS). 


Nettion brasiliense (GM.). 
Geographische Verbreitung: Ganz Südamerika. 


Hymenolepis collaris (BATSCH) 
Hymenolepis megalops (NITZSCH) 
Hymenolepis bisaccata FUHRMANN 
Lateriporus propeteres FUHRMANN 
Lateriporus biuterina FUHRMANN 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Nettion crecca (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter Nord-Afrika, Arabien, Indien, China, Japan. 


Hymenolepis gracilis (ZEDER) 
Aploparaksis fureigera (RuD.) 
Hymenolepis megalops (NITZSCH) 
Hymenolepis fragilis (KRABBE) 
Hymenolepis octacantha (KRABBE) 
Diorchis acuminata CLERC 
Diploposthe laevis (BLOCH) 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Dafila acuta (Liıxn.). 


Geographische Verbreitung: Nordhemisphäre; im Winter 
Nord-Afrika, Indien, China, Japan, Zentralamerika, Westindien. 


Hwymenolepis collaris (BATSCH) 
Hymenolepis megalops (NITZSCH) 
Hymenolepis anatina (KRABBE) 
Hymenolepis octacantha (KRABBE) 


154 0. FuHnrmann, 


Poecilonetta bahamensis (Liss2.). 
Geographische Verbreitung: Tropisches Südamerika, 
Westindien. 


Hymenolepis flagellata FUHRMANN 
Hymenolepis lobata FUHRMANN. 


Ouerquedula querquedula (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter Nord-Afrika, Indien, China, Japan. 
Hymenolepis fallax (KRABBE) 


Diploposthe laevis (BLOCH) 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Spatula celypeata (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Nordhemisphäre; im Winter 
Afrika, Arabien, Indien, Süd-China, Japan, Columbia, Westindien. 
Hymenolepis gracilis (ZEDER) 

Hymenolepis octacantha (KRABBE) 
Hymenolepis anatina (KRABBE) 
Hymenolepis echinocotyle FUHRMANN 
Diploposthe laevis (BLOCH) 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Spatula rhynchotis LATn. 


Geographische Verbreitung: Australien, Tasmanien, Neu- 
seeland. 


Taenia flavescens KREFFT. 


Netta rufina (PALLAS). 
Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer, Zentral- 
Asien; im Winter Indien. 


Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 
Diploposthe laevis (BLOCH) 
Fimbriarta fasciolaris (PALLAS). 


Die Cestoden der Vögel. 155 


Aythya africana (GN.). 


Geographische Verbreitung: Paläarktische Region bis 
Nord-Afrika, Indien. 
Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 


Hymenolepis megalops (NITZSCH) 
Diploposthe laevis (BLOCH). 


Aythya ferina (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter Süd-Europa, Nord-Afrika. 
Hymenolepis lanceolata (BLOCH) 
Hymenolepis furcigera RuD. 
Hymenolepis collaris (BATSCH) 
Hymenolepis setigera FRÖLICH 
Diploposthe laevis (BLOCH). 


Aythya australis (EYTon). 


Geographische Verbreitung: Australien, Neuseeland, 
Neuguinea. 


Diploposthe tuberculata KREFFT. 


Fuligula fuligula (Liss.). 
Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter Japan, Nord-Indien, Sunda-Inseln, Philippinen, Süd-China, 
Mittelmeerländer. 


Hymenolepis sinuosa (ZEDER) 
Hymenolepis. megalops (NITZSCH) 
Diploposthe laevis (BLOCH). 


Fuligula maria Linn. 


Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter Mittelmeerländer, Nordwest-Indien, China, Japan. 


Hymenolepis tenwirostris (RUD.) 
Hymenolepis aequabilis (RuD.) 
Hymenolepis micerosoma (ÜREPLIN) 
Hymenolepis gracilis (ZEDER) 
Hymenolepis megalops (NITZSCH) 
Hymenolepis coronula (DUJARDIN) 


156 0. FuHrmann, 


Hymenolepis fallax (KRABBE) 
Hymenolepis pigmentata (v. LINSTOW) 
Hymenolepis tenerrima (V. LINSTOW) 
Hymenolepis arcuata KOWALEWSKY 
Hymenolepis sp. COHN 

Diploposthe laevis (BLOCH) 

Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Aristonetta vallisneria (Wırs.). 


Geographische Verbreitung: Nordamerika; im Winter 
Zentralamerika, Westindien. 


Hymenolepis compressa (LINTON). 


Clangula clangula (LiNN.). 


Geographische Verbreitung: Nordhemisphäre, arktische 
und subarktische Region; im Winter Süd-Europa, Nord-Indien, China, 
Japan, Mexiko, Westindien. 

Hıymenolepis coronula (DUJARDIN) 
Hymenolepis macracanthos (V. LINSTOW) 
Diploposthe laevis (BLOCH) 

Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Harelda glacialis (Lisx.). 
Geographische Verbreitung: Arktische Region; im Winter 
Süd-Europa, Zentral-Asien, China, Nord- und Zentral-Vereinigte 
Staaten. 


Choanotaenia borealis (v. LINSTOW) 
Hymenolepis microsoma (ÜREPLIN) 
Hymenolepis groenlandica (KRABBE) 
Hymenolepis megalhystera (v. LINSTOW) 
Lateriporus teres (KRABBE) 

Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Histrionicus histrionicus (LiNN.). 


Geographische Verbreitung: Island, nördliches Nord- 
amerika; im Winter Californien, Japan. 


Hymenoleprs pachycephala v. LINSTOW. 


Oedemia fusca (LiNN.). 


Geographische Verbreitung: Nord-paläarktische Region ; 
im Winter Nord- und Zentral-Europa. 


Die Cestoden der Vögel. 157 


Hymenolepis tenwirostris (RUD.) 
Hymenolepis microsoma (ÜREPLIN) 
Lateriporus biuterina FUHRMANN 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Oedemia nigra (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Nord-paläarktische Region; 
im Winter West-Europa. 
Hymenolepis micerosoma (CREPLIN) 
Hymenolepis micraneristrota (WEDL.) 
Diploposthe laevis (BLOCH). 


Oedemia americana (Sw. et RıcH.). 
Geographische Verbreitung: Nördliches Nordamerika, 
Nord-Asien; im Winter Vereinigte Staaten, Japan. 


Taenia macracantha LINTON 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Somateria mollissima (LinN.). 


Geographische Verbreitung: Arktische Region; im Winter 
Baltisches Meer und Nordwest-Europa. 
Tetrabothrius areticum v. LINSTOW 
Hymenolepis tenwirostris (RUD.) 
Hrymenolepis mierosoma (ÜREPLIN) 
Hymenolepis fallax (KRABBE) 
Lateriporus teres (KRABBE) 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Erionetta spectabilis (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Arktische Region; im Winter 
Vereinigte Staaten. 
Hymenolepis microsoma (ÜREPLIN) 
Hymenolepis retracta v. LINSTOW 
. Hymenolepis sibirica (9. LINSTOW) 
Aploparaksıs birulai v. LINSTOW. 


Cygnopsis ceygnoides (Lixn.). 


Geographische Verbreitung: Ost-Sibirien, China, ‚Japan. 


Hymenolepis longicirrosa FUHRMANN 
Diploposthe laevis (BLOCH). 


158 O0. FuUHRMANN, 


Chaulelasmus streperus (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Nordhemisphäre. 
Hymenolepis gracilis (ZEDER) 
Hymenolepis fragilis (KRABBE) 
Hymenolepis octacantha (KRABBE) 
Hymenolepis anatina (KRABBE) 
Hymenolepis teresoides FUHRMANN 
Diorchis acuminata CLERC 
Diploposthe laevis (BLOCH). 


Erismatura leucocephala (Scor.). 


Geographische Verbreitung: Mittelmeerländer; im Winter 
Nord-Westindien. 


Hymenolepis gracilis (ZEDER) 
Hymenolepis coronula (DUJARDIN) 
Hymenoleprs lanceolata (BLOCH) 
Hımenolepis megalops (NITZSCH) 
Diploposthe laevis (BLOCH) 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Biziura lobata (TEmn.). 
Geographische Verbreitung: Australien, Tasmanien. 


Taenıa moschala KREFFT. 


Mergus albellus (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Nord-paläarktische Region 
im Winter Mittelmeerländer, China, Japan. 


Hymenolepis tenwirostris (RUD.). 


Merganser castor (LiNN.). 


Geographische Verbreitung: Nord-paläarktische Region ; 
im Winter Süd-Europa, Japan, China. 


Hymenolepis graeilis (RUD.) 
Hymenolepis tenwirostris (RUD.) 
Hymenolepis tritestieulata FUHRMANN 
Fimbriaria fasciolaris (PALLAS). 


Die Cestoden der Vögel. 159 


Merganser serrator (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Nördliche Nordhemisphäre; 
im Winter Mittelmeerländer, Nordwest-Indien, China, Japan, Ver- 
einigte Staaten. 
Hymenolepis tenwirostris (RuD.) 
Hımenolepis gracilis (ZEDER) 
Diorchis parviceps V. LINSTOW 
Fimbriaria faseiolaris (PALLAS) 
Ophryoeotyle sp. }) 


Psittaciformes. 


Oittotaenia psittacea FUHRMANN 
Moniexia carrinoi DIAMARE 
Moniexia ambigua FUHRMANN 
Moniezia beauforti v. JANICKI 
Aporina alba FUHRMANN 

Davarnea leptosoma (DIESING) 
Davainea macroscolecina FUHRMANN 
Davainea microscolecina FUHRMANN 
Davainea ? longissima (GOEZE) 
Taenia anoplocephaloides FUHRMANN. 


Lorius garrulus (Lıxx.).”) 
Geographische Verbreitung: Brasilien. 
Davainea macroscoleeina FUHRMANN. 


Lorius erythrothorax SALVAD. 


Fundort: Neuguinea. 
Moniexia carrınoi (DIAMARE). 


Trichoglossus novaehollandiae (GN.). 
Geographische Verbreitung: Australien, Tasmania. 
Moniexia carrinoi (DIAMARE). 


Cyclopsittacus suavissimus SCLAT. 
Geographische Verbreitung: Neuguinea. 
Monvexia carrinoi (DIAMARE). 
1) Nach LÖNNBERG. 
2) Die Bestimmung dieses Vogels ist sicher unrichtig, da diese Art 
nicht in Brasilien, sondern nur auf den Molukken vorkommt. 


160 O0. FuUHRMAnN, 


Oyclopsittacus diophthalmus HoMmgr. 
Geographische Verbreitung: Neuguinea. 


Moniexia beauforti JANICKI. 


Cacatua roseicapilla VIEILL. 
Geograpische Verbreitung: Australien. 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Ara aureicollis Cass. 


Geographische Verbreitung: Zentral-Brasilien, Argenti- 
nien, Paraguay, Bolivia. 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Ara severa (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Brasilien, Guyana bis 
Panama. 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Ara macao (Lixn.). 


Geographische Verbreitung: Mexiko, Guyana, Zentral- 
amerika, Amazonia. 


Davarnea leptosoma (DIESING). 


Ara maracana (VTEILL.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Paraguay. 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Ara nobilis (Lısn.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Amazonia. 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Ara macavuanna (GM.). 


Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia, Ecuador, 
Peru. 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Die Cestoden der Vögel. 161 


Amazona amazonica Boiss. 
Geographische Verbreitung: Südamerika. 


Moniezia ambigua FUHRMANN. !) 


Pyrrhua sp. 
Fundort: Brasilien. 


Aporina alba FUHRMANN. 


Conurus guarouba (G1M.). 
Geographische Verbreitung: Nordost-Brasilien, Amazonia. 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Pionospittacus pileatus (ScoP.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Paraguay. 


Davainea macroscolecina FUHRMANN. ?) 


Pionus fuscus (MÜnn.). 
Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia. 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Psittacus erythacus Linn. ?”) 
Geographische Verbreitung: Äquatoriales Afrika. 


Davarnea leptosoma (DIESING) 
Taenia amoplocephaloides FUHRMANN. 


Eclectus rosatus (P. L. MÜLLER). 
Geographische Verbreitung: Molukken. 


Taenia longissima GOEZE. *) 


1) Von DiızsınG als T. leptosoma bestimmt. 

2) Von DızsinG als T. leptosoma bestimmt. 

3) In diesem Vogel ist 7. longissima gefunden worden, aber sie ist 
unkenntlich beschrieben, und die Typen existieren nicht mehr, so daß 
diese Art zu streichen. 


Zool. Jahrb., Supplement X. 11 


162 O. FuHrmann, 


Chrysotis purpurea? 
Kundort: 2 


Davainea leptosoma (DIESING). 


Grauer Papagei. 
Fundort: Afrika. 


Davainea leptosoma (DIESING). !) 


Stringops habroptilus GRAY. 
Geographische Verbreitung: Neuseeland. 


Oittotaenia psittacea FUHRMANN. 


Coceigyformes. 


Davainea difformis (RuD.) 
Davainea calcaria FUHRMANN 
Davainea undulata FUHRMANN 
Davainea macrocirrosa FUHRMANN 
Anomolaenia mutabilis (RUD.) 
Anomotaenia acollum FUHRMANN 
Hıymenolepis intermedius CLERC 
Taenia eyclocephala CHATIN. 


Gallirex porphyreolophus (V16.). 
Geographische Verbreitung: Süd-Afrika. 


Taenia filiformis RUD. ?) 


Cuculus canorus Lin. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien; im 
Winter Afrika, Indien bis Australien. 


Davainea difformis RUD. 
Hymenolepis intermedius UCLERC. 


1) Diese Bestimmung scheint mir zweifelhaft. 

2) Taenia filiformis Rup. wurde in einem Papagei gefunden und 
wird auch als in Galliree vorkommend zitiert; da diese Art aber nur be- 
nannt und nicht beschrieben, ist die Bestimmung wertlos und sicher un- 
richtig. 


Die Cestoden der Vögel. 163 


Cuculus intermedius (VAHL). 


Geographische Verbreitung: Von Sibirien bis Japan; im 
Winter Süd-China und Indien bis Malayischer Archipel, Neuguinea, 
Neubritannien, Australien. 


Hymenolepis intermedius CLERC. 


Cocca gigas (BoD».). 
Geographische Verbreitung: West- und Süd-Madagaskar. 


Taenia cyclocephala CHATIN. 


Guira guira (GM.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Paraguay. 


Anomotaenia mutabilis (RuD.). 


Crotophaga ani Lin. 


Geographische Verbreitung: Vereinigte Staaten, Zentral- 
amerika, Westindien, Südamerika. 


Anomotaenia mutabrlis (RuD.) 
Anomotaenia acollum (FUHRMANN). 


Crotophaga major (LinN.). 


Geographische Verbreitung: Südamerika von Columbien 
bis Peru. 


Anomotaenia mutabilis (RuD.). 


Corythaeola cristata VIEILL. 


Geographische Verbreitung: West- und Zentral-Afrika. 
Davainea calcarıa FUHRMANN 
Davainea undulata FUHRMANN. 


Turacus bufjoni \VIEILL. 


Geographische Verbreitung: Vom Congo bis zum Senegal. 


Davainea macroeirrosa FUHRMANN. 


Coraciiformes. 
Bertia pingwis FUHRMANN 
Davainea magnicoronata FUHRMANN 
Ophryocotyle xzeylanica v. LINSTOwW 
1412 


164 O0. FuHrmarN, 


Choanotaenia megacantha (RuD.) , 
Choanotaenia pauciannulata FUHRMANN 

Choanotaenia asymetrica FUHRMANN 

Dilepis caprimulgorum FUHRMANN 

Biuterina meropina (KRABBE) 

Biuterina meropina (KRABBE) var. macraneristrota FUHRMANN 
Biuterina rectangula FUHRMANN 

Biuterina lobata FUHRMANN 

? Biuterina trapezoides FUHRMANN 

Hymenolepis septaria v. LINSTOW 

Hnymenolepis brasiliensis FUHRMANN 

Hhnymenolepis caprimulgorum FUHRMANN 

Hymenolepis parvirostellata (v. LINSTOW) 

Taenia simpla LEIDY 

Taenıa intricala KRABBE 

Taenıa caprimulgi KRABBE. 


CGoraciae. 


Coracias garrulus Linn. 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa; 
im Winter Afrika und Nordwest-Indien. 


Biuterina rectangula FUHRMANN. 


Eurystomus afer (LATn.). 
Geographische Verbreitung: Zentral-Afrika. 


Hıymenolepis parvirostellata (v. LINSTOW). 


Caprimulgi. 


Lurocalis semitorquatus (GM.). 
Geographische Verbreitung: Süd-Brasilien, Guyana. 


Choanotaenia megacantha (RuD.) 
Nyetibius jamaicensis (GM.). 


Geographische Verbreitung: Mexico, Columbia, Jamaica. 


Choanotaenia megacantha (RuD.). 


Die Cestoden der Vögel. 165 


Caprimulgus europaeus (Lixn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Süd-Sibirien; im 
Winter Ost- und Süd-Afrika. 


Choanotaenia megacantha (RuD.) 


Caprimulgus ruficollis Tem. 
Geographische Verbreitung: Nord-Afrika, Südwest-Europa. 


Choanotaenia megacantha (RUD.). 


Caprimulgus carolinensis (GM.). 


Geographische Verbreitung: Süden der Vereinigten 
Staaten; im Winter Westindische Inseln, Zentralamerika bis Brasilien. 


Hymenolepis brasiliensis FUHRMANN 
Taenia simpla LEIDY. 


Caprimulgus lineatus? 
Fundort: Brasilien. 


Hymenolepis brasiliensis FUHRMANN. 


Caprimulgus sp. 
Fundort: Brasilien. 


Choanotaenia asymetrica FUHRMANN. 


Caprimulgus sp. 
Fundort: Turkestan. 


Taenia caprimulgi KRABBE. 


Caprimulgus Sp. 
Fundort: Brasilien. 


? Biuterina trapexoides FUHRMANN. 


Caprimulgus Sp: 
Fundort: Brasilien. 


Choanotaenia megacantha (RuD.). 


166 OÖ. FuHRMARN, 


Hydropsalis climacocereus (Tsch.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Peru und Ecuador. 


Dilepis caprimulgorum FUHRM. 


Podager nacunda (VIEILL.). 
Geographische Verbreitung: Südamerika. 


Davainea magnicoronata FUHRMANN 
Choanotaenia pauciannulata FUHRMANN 
Hymenolepis caprimulgorum FUHRMANN. 


Nyetiprogne leucopygia (SPIx). 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Cayenne. 


Hymenolepis brasiliensis FUHRMANN. 


Chordeiles virginianus (GM.) 


Geographische Verbreitung: Östliches Nordamerika; im 
Winter Zentral- und Südamerika, Westindien. 


Dilepis caprimulgorum FUHRMANN. 


Chordeiles rupestris (SPIX). 
Geographische Verbreitung: Amazonia, Bolivia, Peru. 


Hymenolepis caprimulgorum FUHRMANN. 


Bucerotidae. 


Ocyceros gingalensis SHAW. 
Geographische Verbreitung: Nur Ceylon. 


Ophryocotyle zeylanica V. LINSTOW. 


Bucorax abyssinius (BoDD.). 
Geographische Verbreitung: Nordwest- und West-Afrika. 


Bertia pingwis FUHRMANN. 


Die Cestoden der Vögel. 167 


Upupidae. 
Upupa epops Linn. 


Geographische Verbreitung: Südpaläarktische Region. 


Biuterina lobata FUHRMANN 
Taenia intricata KRABBE. 


Upupa indica ReıcH. 
Geographische Verbreitung: Indien, Ceylon. 


Hymenolepis septaria v. LINSTOW. 


Meropidae. 


Merops apiaster Linn. 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Zentral-Asien; im Winter Afrika und Asien. 


Biuterina meropina var. maerancristrota FUHRMANN. 


Merops superciliosis (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Madagascar, Afrika. 


Biuterina meropina (KRABBE). 


Melitophagus albifrons (Ca». et HEINE). 
Geographische Verbreitung: Süd- und Ost-Afrika. 


Biuterina meropina var. macraneristrota FUHRMANN. 


Strigiformes. 


Paruterina candelabraria (GOEZE) 
Paruterina angustata FUHRMANN 
Taenia strigis-acadiae LEIDY. 


Syrnium aluco Liss. 


Geographische Verbreitung: Europa, Kleinasien, Nord- 
Afrika. 


Paruterina candelabraria (GOEZE). 


168 O0. FUHRMAnN, 


Asio accipitriwus PALL. 
Geographische Verbreitung: Kosmopolit. 


Paruterina candelabraria (GOEZE). 


Asio otus (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Sibirien, China, 
Japan. 


Paruterina candelabraria (GOEZE). 


Bubo ingnavus Forst. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien, selten 
Nordost-Afrika. 


Paruierina candelabraria (GOEZE). 


Scops scops (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien, 
Nordwest-Indien. 


Paruterina candelabraria (GOEZE). 


Scops brasiliana (GM.). 


Geographische Verbreitung: Brasilien, Columbien, Guyana, 
Venezuela. 


Paruterina angustata FUHRMANN. 


Nyetale tengmalmi (GM.). 
Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Nord-Asien. 


Paruterina candelabraria (GOEZE). 


Nyctale acadica (G1.). 
Geographische Verbreitung: Nordamerika bis Mexico. 


Taenia strigis-acadıae LEIDY. 


Brachyotus palustris Forst. 
Geographische Verbreitung: 


Paruterina candelabraria (GOEZE). 


Die Cestoden der Vögel. 169 


Piei. 

Moniexia variabilis FUHRMANN 
Davainea eruciata (RUD.) 
Davainea frontina (DUJ.) 
Davainea lutzi PARONA. 
Davarnea longispina FUHRMANN 
Liga punctata WEINLAND 
Choanotaenia producta (KRABBE) 
Choanotaenia brevis ÜLERC 
Choanotaenia crassitestata FUHRMANN 
Fuhrmannia brasiliensis PARONA 
Monopylidium erateriforme (SCHRANK) 
Anonchotaenia conica FUHRMANN 
Taenia vexata LEIDY. 

Rhamphastos culminatus GOULD. 


Geographische Verbreitung: Peru, Bolivia, Ecuador, 
Columbia. 


Moniexia vartabilis FUHRMANN. 


Rhamphastos dicolorus Lixn. 
Geographische Verbreitung: Südost-Brasilien, Paraguay. 


Moniezia variabilis FUHRMANN. 


Rhamphastos erythrorhynchus GM. 


Geographische Verbreitung: Guyana, Unter-Amazonia, 
Nord-Brasilien. 


Moniezia variabilis FUHRMANN. 


Rhamphastos toco (MÜLL.). 


Geographische Verbreitung: Guyana, Unter-Amazonia, 
Brasilien, Bolivia, Paraguay, Nord-Argentinien. 


Moniezia variabiliss FUHRMANN. 
Pteroglossus inscriptus SWAINS. 


Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia. 


Choanotaenia crassitestata FUHRMANN. 


170 O0. FuHrumann, 


Colaptes campestris (VTEILL.). 


Geographische Verbreitung: Brasilien, Uruguay, Argen- 
tinien. 


Davainea frontina (DuJ.) 


Colaptes auratus (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Nordamerika. 


Liga punctata WEINLAND. 


Dendrocopus major (Lisz.). 
Geographische Verbreitung: Europa, Kleinasien, Süd- 
Sibirien. 
Davainea frontina (Du3.) 
Monypylidium erateriforme (GOEZE) 
Choanotaenia brevis CLERC 
Anonchotaenia conica FUHRMANN. 
Celeus elegans (MÜLLER). 


Geographische Verbreitung: Venezuela, Trinidad, Nord- 
Brasilien. 


Davarinea longispina FUHRMANN. 


Celeus flavescens (G1M.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien. 
Davainea longispina FUHRMANN 
Davainea lutzi PARONA. 
Dryotomus pileatus (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Nordamerika. 


Taenia vexata LEIDY. 


Ceophlocus lineatus (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Guyana, Panama, Peru, 
Brasilien, Paraguay. 


Davainea eruciata (RuD.) 
Davainea longispina FUHRMANN. 


Die Cestoden der Vögel. IL 


Picus martius Lin. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien, Japan. 


Davainea frontina (Du3.) 
Monopylidium erateriforme (DuJ.). 


Geeinus viridis (LisN.). 


Geographische Verbreitung: Kleinasien, Persien, Europa. 


Davainea frontina (DuJ.) 
Monopylidium crateriforme (GOEZE) 
Choanotaenia producta (KRABBE). 


Gecinus camus (GM.). 


Geographische Verbreitung: 
Öst-Sibirien, Nord-China, Japan. 


Davainea eruciata (RuD.) 
Monopylidium erateriforme (GOEZE). 


Picus sp. 
Fundort: Brasilien. 
Davainea frontina (DuJ.) 


Davainea lutzi PARONA 
Fuhrmannia brasiliensis PARONA. 


Picus sp. 
Fundort: Brasilien. 
Davainea longispina FUHRMANN. 


Picus sp. 
Fundort: Brasilien. 


Davainea longispina FUHRMANN. 


Passeriformes. 


Mesocestoides alaudae STOSSICH 
Davainea spinosissima V. LINSTOW 
Davainea compacta CLERC 
Davainea paradıises FUHRMANN 
Davainea uniuterina FUHRMANN 
Davainea corvina FUHRMANN 
Davainea globocephala FUHRMANN 
Choanotaenia galbulae (ZEDER) 


Nordost-Europa, Süd- und 


172 0. Fuurmann, 


Choanotaenia parina (DUJARDIN) 
Choanotaenia parvirostris (KRABBE) 
Choanotaenia macracantha FUHRMANN 
Dilepis undula (SCHRANK) 

Dilepis attenuata (DUJARDIN) 

Dilepis niodigliant (PARONA) 
Anomotaenia quadrata (RuD.) 
Anomotaenia cyathiformis (FRÖLICH) 
Anomotaenia constrieta (MOLIN) 
Anomotaenia depressa (V. SIEBOLD) 
Anomotaenia ovolaciniata (v. LINSTOW) 
Anomotaenia dehiscens (KRABBE) 
Anomotaenia borealis (KRABBE) 
Anomotaenia trigonocephala (KRABBE) 
Anomotaenia vesieuligera (KRABBE) 
Anomotaenia brevis (CLERC) 
Anomotaenia brasiliensis FUHRMANN 
Anomotaenia isacantha FUHRMANN 
Anomotaenia penicillata FUHRMANN 
Anomotaenia cyathiformoides FUHRMANN 
Anomotaenia undulatoides FUHRMANN 
Anomotaenia hirundina FUHRMANN 
Anomotaenia (?) paueitesticulata FUHRMANN 
Parvirostrum reticulatum FUHRMANN 
Angularia beema CLERC 

Acanthocirrus macrorostratus FUHRMANN 
Monopylidium musculosum FUHRMANN 
Monopylidium unicoronatum FUHRMANN 
Monopylidium passerinum FUHRMANN 
Biuterina campanulata (RuD.) 
Biuterina longiceps (RuD.) 

Biuterina elavulus (v. LINSTOW) 
Biuterina triangula (KRABBE) 
Biuterina trigonacantha FUHRMANN 
Biuterina distineta FUHRMANN 
Biuterina trapexoides FUHRMANN 
Biuterina passerina FUHRMANN 
Biuterina globosa FUHRMANN 

Biuterina motacilla FUHRMANN 
Biuterina eylindrica FUHRMANN !) 
Biuterina (?) planirostris (KRABBE) 
Paruterina parallelepipeda (RuD.) 
Anonchotaenia globata (v. LINSTOW) 


1) Diese Art steht nicht in der Liste der Biuterina-Arten (p. 68), 
sie ist nachträglich gefunden worden und ist mit den andern Diuterina- 
Arten in einer im Druck befindlichen Arbeit beschrieben (s. Literatur- 
verzeichnis). 


Die Cestoden der Vögel. 173 


Anonchotaenia bobica CLERC 
Anonchotaenia longiovata FUHRMANN 
Anonchotaentia brastliensis FUHRMANN 
Anonehotaenia macrocephala FUHRMANN 
Anonchotaenia trochili FUHRMANN 
Hymenolepis stylosa (RuD.) 
Hymenolepis fringillarum (RuD.) 
Hymenolepis fareiminosa (COEZE) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK) 
Hymenolepis naja (DUJARDIN) 
Hymenolepis bilharzui (KRABBE) 
Hymenolepis petrocinclae (KRABBE) 
Hıymenolepis orientalıs (KRABBE) 
Hymenolepis hemignathi SHIPLEY 
Hymenolepis polygramma (v. LINSTOW) 
Hymenolepis dahurica v. LINSTOW 
Hymenolepis pellucida FUHRMANN 
Hymenolepis microscolecina FUHRMANN 
Hymenolepis brevis FUHRMANN 
Hymenolepis interruptus OLERC 
Hymenolepis passerina FUHRMANN 
Hymenolepis parina FUHRMANN 
Hymenolepis tichodroma WOLFFHÜGEL 
Aploparaksıs dıyardini (KRABBE) 
Anonchotaenia oriolına CHOLODKOVSKY 
Taenia plalycephala Run». 

Taenıa pyramidata RuD. 

Taenia motacillae-cayanae RuD. 

Taenia motacillae-provincialis RUD. 
Taenia motaecillae brasiliensis RUD. 
Taemia exigua DUJARDIN 

Taenıa purpurata DUJARDIN 

Taenıa pestifera LEIDY 

Taenia urnigera LEIDY 

Taenia oporornis LEIDY 

Taenia chlamydoderae KREFFT 

Taenia collieulorum KRABBE 

Taenia praecox KRABBE 

Taenıa polyarthra KRABBE 

Taenia pyramidalis SINITZINE 

Taenıa muscicapae v. LINSTOW 
Taenia caracina PARONA. 


Tyrannidae. 
Taenioptera velata (LicHr.). 


Geographische Verbreitung: Brasilien, Bolivia. 
Biuterina campanulata RuD, 


174 0. Fuurnann, 


Synallasis phryganophia (V1EILL.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Bolivia, Paraguay, 
Uruguay. 


Biuterina trigonacantha FUHRMANN. 


Dendrornis elegans PELz. 
Geographische Verbreitung: Zentral-Brasilien. 


Parvwirostrum reticulatum FUHRMANN. 


Dendrornis rostripalleus DEs Murs. 
Geographische Verbreitung: Nördl. Südamerika. 


Parvirostrum retieuwlatum FUHRMANN. 


Picolaptes fuscicapillus PELz. 
Geographische Verbreitung: Brasilien, Ecuador. 


Parwrostrum reticulatum FTUHRMANN. 


Chamaeza brevicauda (VIEILL.). 
Geographische Verbreitung: Südost-Brasilien. 


Taenia pyramidata RuD. 


?’ Thamnophilus sulfuratus TEmM. 
Fundort: Brasilien. 


Biuterina campanulata RUD. 


Cotungidae. 
Tityra semifasciata (SPIx). 


Geographische Verbreitung: Süd-Mexico, Zentralamerika, 
Nördl. Südamerika. 


Biuterina globosa FUHRMANN. 


Die Cestoden der Vögel. 175 


Rupieola rupicola (Lisz.). 
Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia. 


Davainea uniuterina FUHRMANN 
Hıymenolepis microscolecına FUHRMANN. 


Pyroderus scutatus (SHAW). 
Geographische Verbreitung: Südost-Brasilien, Paraguay. 


Taenia caracina PARONA. 


Myothera sp. 
Fundort: Brasilien. 


Choanotaenia macracantha FUHRMANN. 


? Myothera campanisona. 
Fundort: Brasilien. 


Taenia pyramidata RuD. 


Turdidae. 


Sylvia atricapilla (Lisx.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Persien; im Winter 
Süd-Europa und Nord-Afrika. 


Taenia platycephala RuD. 


Sylvia sylvia (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien; im 
Winter Afrika. 


Taenia platycephala Run. 
Taenia purpurata DUuJ. 


Sylvia curraca (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Europa; im Winter Nord- 
Afrika. 


Taenia platycephala RuD. 


176 O. FunrMmans, 


Sylvia hortensis BECHST. 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Kleinasien, Nord-Afrika. 


Taenia platycephala RuD. 


Sylvia nisoria (BECHST.). 
Geographische Verbreitung: Süd-Europa und Zentral- 
Asien; im Winter Nordost-Afrika. 
Taenia platycephala RuD. 
Agrobates galactodes TEnn. 
Geographische Verbreitung: Westliche Mittelmeerländer. 


Hymenolepis bilharzii (KRABBE). 


Melizophilus undatus (BoD».). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa 
im Winter Nord-Afrika. 


Taenia motacillae-provincialis RUD. 


Locustella fluviatilis (WoLr). 


Geographische Verbreitung: Ost- und Zentral-Europa, 
Kleinasien, Palästina; im Winter Nordost-Afrika. 


Hymenolepis brevis FUHRMANN 
Taenia platycephala RuD. 


Turdus musicus Linn. 


Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter Süd-Europa und Nord-Afrika. 
Anomotaenia constriela (MOLIN) 
Dilepis undula (SCHRANK) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK) 
Aploparaksis dujardini KRABBE. 


Turdus merula Lisn. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Afrika, Persien, 
Turkestan. 


Davainea spinosissima (V. LINSTOW) 
Anomotaenia constrieta (MOLIN) 


Die Cestoden der Vögel. 27 


Dilepis undula (SCHRANK) 
Monopylidium unicoronatum FUHRMANN 
Hymenoiepis serpentulus (SCHRANK). 


Turdus pilaris Linn. 
Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter Süd-Europa, Zentral-Asien, Nordwest-Indien. 


Biuterina triangula (KRABBE) 
Dilepis undula (SCHRANK) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


Turdus iiaca (Lins.). 

Geographische Verbreitung: Grönland, Europa; im Winter 
Zentral- und Süd-Europa. 
Anomotaenia constrieta (MOLIN) 
Dilepis undula (SCHRANK) 
Aploparaksis dujardini (KRABBE). 

Turdus viscivorus Linn. 

Geographische Verbreitung: Zentral-Europa; im Winter 

Süd-Europa, Zentral-Rußbland. 


Dilepis undula (SCHRANK) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


Turdus albiventris Spıx.!) 
Geographische Verbreitung: Columbia, Venezuela, Guyana, 
Brasilien. 
Taenıa pyramidata RuD. 


Turdus atrigularis (Temn.). 
Geographische Verbreitung: 


Dilepis undula (SCHRANK) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


Turdus torquatus (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Nord-Europa; im Winter 
Zentral- und Süd-Europa. 
Dilepis undula (SCHRANK) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


1) In der helminthologischen Literatur mit dem Museumsnamen Turdis 
humilis LICHT. benannt. 
Zool. Jahrb., Supplement X. 12 


178 OÖ. FuUHRMAnN, 


Turdus migratorius Liss. 
Geographische Verbreitung: Arktisches Amerika. 


? Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


Turdus sp. 
Hundont:2 


Biuterina triangula (KRABBE). 


? Turdus parochus. 
Fundort: Ägypten. 


Hymenolepis passerina FUHRMANN. 


4Aedon luscinia (Lixs.). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa 
bis Zentral-Asien; im Winter Nordost-Afrika. 


Taenia pyramidalis SINITZINE. 


Petrophila eyanus (Linn.). 


(seographische Verbreitung: Süd-Europa und Zentral- 
Asien; im Winter in Nordost-Afrika, Indien, Süd-China. 


Hymenolepis petrocinclae (KRABBE). 


Monticola saxatilis (Linx.). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Turkestan, Nordost-Sibirien, Nord-China; im Winter Ost-Afrika, 
Nordwest-Indien. 


Dilepis undula (SCHRANK). 


Phoenicurus phoenicurus (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Paläarktische Region; im 
Winter West- und Aquatorial-Afrika. 


Taenia platycephala Rud. 
Phoenicurus erythrogastra (GÜLD.). 
(seographische Verbreitung: Kaukasus. 


Taenia praecox KRABBE. 


Die Cestoden der Vögel. 179 


Saxicola oenanthe (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Sibirien bis 
Alaska; im Winter Ost-Afrika, Nord-Indien. 


Anomotaenia trigonocephala (KRABBE) 
Hymenolepis orientalis (KRABBE) 
Taenıa platycephala RuD. 


? Saxicola rubicola BECHST. 
Taenıa platycephala RuD. 


Timelidae. 


Anothura troglodytes (LIsN.). 


Geographische Verbreitung: Nord- und Zentral-Europa, 
Mittelmeerländer. 
Dilepis attenuata (DUJARDIN) 
Taenıia exigua DUJARDIN. 

Cinclus aquaticus BECHST. 

Geographische Verbreitung: Zentral- und West-Europa. 
Anomotaenio dehiscens KRABBE 
Taenıa polyarthra KRABBE. 

Chlamydera maculata (0ULD. 


Geographische Verbreitung: Süd- und West-Australien. 
Taenia chlamydoderae KREFFT. 


Gerthiidae. 


Certhia familiaris Linn. 


Geographische Verbreitung: Skandinavien, Zentral- und 
Süd-Europa. 
Hymenolepis naja (DUJARDIN). 


Ticehodroma muraria (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Alpine Region von Europa 
und Nord-Afrika. 


Hymenolepis tichodroma WOLFFHÜGEL. 
12: 


180 O0. Funrmans, 


Sitta europaea Linn. 


Geographische Verbreitung: Skandinavien und Rußland. 
Hymenolepis naja (DUJARDIN). 


Sitta uralensis Licht. 
Geographische Verbreitung: West-Sibirien. 


Anonchotaenia bobiea ÜLERC. 


Paridae. 


Periparus ater (Liss.). 
Geographische Verbreitung: Europa. 
Anonchotaenia globata (v. LINSTOW) 
Hymenolepis fringtillarım (RuD.). 
?Parus coeruleus Linn. 
Anonchotaenia globata (v. LINSTOW) 
Ohoanotaenia parina (DUJARDIN) 
Hymenolepis fringillarum (RuD.). 
Parus major Linn. 
Geographische Verbreitung: Europa, Sibirien. 


Anonchotaenia globata (v. LINSTOW) 
Anonchotaenia bobica ÜLERC 
Hymenolepis fringillarum (RuD.) 
Hymenolepis polygramma (v. LINSTOW) 
Hymenolepis parina FUHRMANN. 


Parus palustris Linn. 


Geographische Verbreitung: West- und Zentral-Europa, 
Kleinasien. 


Anonchotaenia globata (v. LINSTOW) 
Hymenolepis fringillarum (RuD.). 
Lophophanes eristatus (Lisn.). 
Geographische Verbreitung: Nord- und Ost-Europa. 


Hymenolepis fringilarum (RuD.). 


Die Cestoden der Vögel. 181 


Aegithalus caudatus (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Nord- und Zentral-Europa, 


Sibirien. 


Hymenolepis fringillarum (RuD.). 


Neetarinidae. 


?’ Nectarinia calcarata. 
Fundort: Afrika. 


Anonchotaenia globata (v. LINSTOW). 


Alaudidae. 


Alauda arvensis Lisn. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien bis 


China. 


Mesocestordes alaudae STOSSICH 
Biuterina passerina FUHRMANN 
Anonchotaenia globata (v. LINSTOW) 
Taenia platycephala Run». 


Alauda sp. 


Fundort: Turkestan. 


Binuterina (?) planirostris (KRABBE). 


Galerita cristata Linn. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Afrika, Nord- 


Indien. 


Biuterina passerina FUHRMANN 
Anonchotaenia globata FUHRMANN 

(?) Hymenolepis serpentulus (SCHRANK) 
(?) Dilepis undula (RuD.) 

Taenıa platycephala RuD. 


182 OÖ. FuUHRMAnNn, 


Sylvicolidae. 


Motacilla alba Linn. 


Geographische Verbreitung: Ganz Europa, Nord-Asien; 
im Winter Afrika, Indien. 


Anomotaenia borealis (KRABBE) 
Tuenia museicapae V. LINSTOW. 


Motaeilla falva L. 
Geographische Verbreitung: Europa; im Winter Afrika. 


Anomotaenia trigonocephala KRABBE 
Taenia platycephala RUDOLPHI. 


Motacilla sp. 
Fundort: Brasilien. 


Taenia motaeillae-brasiliensis RUD. 


Anthus spipoletta (Lisx.). 


Geographische Verbreitung: Süd- und Zentral-Europa, 
Turkestan, Persien, Ost-Sibirien, China. 


Taenia platycephala RuD. 


Anthus trivialis (Lisn.). 
Geographische Verbreitung: Nord- und Zentral-Europa, 
Sibirien; im Winter Afrika und Indien. 
Taenıa platycephala Ru». 
Anthus campestris Linn. 


Geographische Verbreitung: Süd- und Zentral-Europa; 
im Winter Nordost-Afrika und Indien. 
Taenıa platycephala RuD. 


Anthus pratensis Linn. 
Geographische Verbreitung: Ganz Europa; im Winter 
Nord-Afrika. 
Dilepis attenuata (DUJARDIN) 


Taenia platycephala Run». 
Acanthoeirrus macrorostratus FUHRMANN. 


Die Cestoden der Vögel. 183 


Coerebidae. 


Dacnis cayana Linn. 
Geographische Verbreitung: Südliches Südamerika. 


Biuterina motacilla FUHRMANN 
Taenva motacıllae-cayanae RuD. 


Fringillidae. 


Coccothraustes coccothraustes Linn. 
Geographische Verbreitung: Europa. 


Taenia sp. 


Fringilla coelebs Lisn. 
Geographische Verbreitung: Europa. 


Anonchotaenia globata (v. LINSTOW) 
Dilepis attenuata (DUJARDIN) 
Hymenolepis fringillarum (RuD.) 
Taenia exigua DUJARDIN. 


Spermophila caerulescens Bonn. 
Geographische Verbreitung: Süd-Brasilien, Paraguay, 
Bolivia, Argentinien. 


Anonchotaenia globata (v. LINSTOW). 


Acanthis linaria (Lisx.). 
Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Sibirien, Nord- 
amerika. 


Hymenolepis fringillarum (RuD.) 
Anonchotaenia globalta (v. LINSTOW). 


Fringilla montifrigila Liss. 
Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien bis 
Japan. 


Hymenolepis fringillarum Run. 


184 OÖ. FuUHRMANN, 


?’ Fringilla ruficeps. 
Fundort: Agypten. 


Monopylidium passerinum FUHRMANN. 


Chrysomitris spinus Lisn. 


Geographische Verbreitung: Europa und Nord-Asien bis 
Japan. 


Anonchotaenia globaia (v. LINSTOW) 
Anonchotaenia bobica CLERC. 
Hymenolepis fringillarım (RuD.). 


Acanthis cannabina Lin. 


Geographische Verbreitung: Europa bis Turkestan, 
Nordost-Afrika. 


Hymenolepis fringilarım (RuD.). 


Passer domesticus Linn. 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien, 
Indien. 


Dilepis attenuata (DUJARDIN) 
C'hoanotaenia parina (DUJARDIN) 
Monopylidium passerinum FUHRMANN 
Anonchotaenia globata (v. LINSTOW) 
Hymenolepis fringillarum (Run».). 


Passer montanus Lisn. 
Geographische Verbreitung: Europa bis Japan, Nord- 
Afrika. 


Dilepis attenuata (DUJARDIN) 
Choanotaenia parina (DUJARDIN) 
Anonchotaenva globata (v. LINSTOW) 
Hymenolepis fringillarum (RuD.). 


Loxia ceurvirostra Lisn. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien bis 
Japan, Nordamerika. 


Anonchotaenia globata (v. LINSTOW). 


Die Cestoden der Vögel. 18 


Su 


Emberiza eitrinella Liss. 
Geographische Verbreitung: Europa bis West-Sibirien. 


Anomotaenia borealis (KRABBE) 
Biuterina passerina FUHRMANN. 


Emberiza melanocephala Scor. 
Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Zentral-Indien. 


Anonchotaenia globata (9. LINSTOW) 
Taenia platycephala RuD. 


Emberiza sp. 
Fundort: Brasilien. 


Anomotaenia tsacantha FUHRMANN. 


Emberiza sp.') 
Fundort: Brasilien. 


Biuterina trapexordes FUHRMANN. 


Plectrophenax nivalis (Lınx.). 
Geographische Verbreitung: Nördl. Hemisphäre. 


Anomotaenia borealis (KRABBE). 


Zonotrichia pileata (BoD»D.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien. 


Anonchotaenia globata (v. LINSTOW). 


Loxops sp. 
Fundort: Sandwich-Inseln. 


Anonchotaenia longiovata (FUHRMANN). 


1) Es ist fraglich, ob dieser Vogel wirklich eine Zmberixa und nicht 
eine Mniotilide ist. 


186 OÖ. FuUHrMmARn, 


Drepanidae. 


Hemignathus procerus CA®. 
Geographische Verbreitung: Sandwich-Inseln. 


Hymenolepis hemignatht (SHIPLEY). 


Tanagridae. 


Tachyphonus eristatus GM. 
Geographische Verbreitung: Südamerika bis Rio grande 
do Sul. 


Biuterina cylindrica FUHRMANN. 


Tachyphonus melaleucus (SPAR.). 
Geographische Verbreitung: Panama, Süd-Amerika. 


Biuterina cylindrica FUHRMANN 
Anonchotaenia sp. 


Tanagra sp. 
Fundort: Mexico. 
Anonchotaenia sp. 
Eucometis pendeillatus SCL. 
Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia, Ost-Peru. 


Anonchotaenia sp. 


Ploceidae. 


Spermestes cucullata SWAINS. 
Geographische Verbreitung: West-Afrika. 


Taenia sp. 


leteridae. 


Gymnostinops yuracarium D'ÖRB. 
Geographische Verbreitung: Bolivia, Brasilien, Ecuador. 


Anomotaenia penietllata FUHRMANN 
Hymenolepis pellucida FUHRMANN. 


Die Cestoden der Vögel. 187 


Ostinops decumanus (PALL.). 


Geographische Verbreitung: Panama, Südamerika bis 
Bolivia. 


Biuterina longiceps (RuD.) 
Hymenolepis pellucida FUHRMANN. 
Ostinops viridis MÜLL. 


Geographische Verbreitung: Britisch Guyana, Amazonia, 
Ecuador. 


Anomotaenia penieillata FUHRMANN 
Hymenolepis pellucida FUHRMANN. 
Cassicus affinis Sw. 

Geographische Verbreitung: Guyana, Cayenne, Amazonia. 
Biuterina longiceps (RuD.) 
Davainea globocephala FUHRMANN 
Anonchotaenia brasiliensis FUHRMANN. 

Cassidix oryzivora GM. 
Geographische Verbreitung: Nord- und Südamerika. 


Anonchotaenia sp. 


Dolichony& oryzivorus Lisn. 
Geographische Verbreitung: Nordamerika, Zentralamerika, 
Brasilien, Peru. 


Taenia pestifera LEIDY. 


Curacus aterrimus (KıTTı.). 
Geographische Verbreitung: Chili bis Magalhaens-Strabe. 


(?) Anonchotaenia longiovata (FUHRMANN). 


Molothrus pecoris GM. 
Geographische Verbreitung: Nordamerika bis Mexico und 
Californien. 
Büuterina trapexoides FUHRMANN 


Taenia pestifera LEIDY 
Taenia urnigera LEIDY. 


188 0. FuHRMmann, 


Icterus cayennensis Linn. 
Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia. 


Anonchotaenia longiovata FUHRMANN. 


Ieteria viridis GM. 


Geographische Verbreitung: Vereinigte Staaten, Mexico, 
(ruatemala. 


Taenia pestifera LEIDY. 


Tyrannidae. 


Serphophaga hypoleuca Scı. 
Geographische Verbreitung: Östl. Peru. 


Anonchotaenia sp. 


Tyrannus melancholicus \VIEILL. 


Geographische Verbreitung: Mexico, Zentralamerika, Süd- 
amerika bis Buenos Ayres. 


Anonchotaenia sp. 


Sturnidae. 


Sturnus vulgaris Liss. 


Geographische Verbreitung: West- und Zentral-Europa, 
Nord-Afrika, Persien. 
Monopylidium musculosum FUHRMANN 
Dilepis undula (SCHRANK) 
Hymenolepis fareiminosa (GOEZE) 
Aploparaksıs dujardini (KRABBE) 
(?) Choanotoenia parina DUJARDIN. 


Sturnus unicolor TEmM. 
Geographische Verbreitung: Länder des Mittelmeeres. 


Hymenolepis farciminosa (GOEZE). 


Die Cestoden der Vögel. 


Oriolidae. 


Oriolus galbula Lisn. 


189 


Geographische Verbreitung: Ganz Europa, Persien, Süd- 


west-Asien; im Winter in Afrika. 


Davainea compacla CLERC 

Dilepis undula SCHRANK 

C'hoanotaenia galbulae (ZEDER) ÜOHN 
Anonchotaenia oriolina CHOLODKOVSKY 
Hymenolepis stylosa (RUD.) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK) 
Hymenolepis fareiminosa (GOEZE). 


Paradiseidae. 


Psilorchis alberti ELLıor. 
Geographische Verbreitung: 
Biuterina clavulus (v. LINSTOW). 
Paradisea raggiana SCLATER. 
Geographische Verbreitung: Neuguinea. 


Biuterina celavulus (v. LINSTOWw). 


Manucodia chalybeata Penn. 
Geographische Verbreitung: Neuguinea. 


Davarnea paradısea FUHRMANN. 


Corvidae. 


Trypanocorax frugilegus Liss. 


Geographische Verbreitung: Ganz Europa, Zentral-Asien, 


Nordwest-Indien. 


Dilepis undula (SCHRANK) 
Anomotaenia constricta (MOLIN) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


190 O0. FUHRMAnN, 


Corvus corax Linn. 


Geographische Verbreitung: Ganz Europa, Nord- und 
Zentral-Asien, Nordamerika bis Mexico. 


Dilepis undula (SCHRANK) : 
Anomotaenia constrieta (MOLIN) 
Hymenolepis stylosa (RuD.) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 
Corvus culminatus SYK. 
Geographische Verbreitung: Indien. 


Davainea corvina FUHRMANN. 


Corvus macrorhynchus WAGL. 
Geographische Verbreitung: Malakka, Sunda-Inseln. 


Davaınea corvina FUHRMANN. 


Corvus dahuricus PALL. 
Geographische Verbreitung: Sibirien, Baikal-See. 


Hymenolepis dahurica v. LINSTOW. 


Coloeus monedula (Linx.). 
Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Afrika. 


Dilepis undula (SCHRANK) 
Anomotaenia constrieta (MOLIN) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK) 
IIymenolepis stylosa (RUD.). 


Corone cornis Lisn. 


Geographische Verbreitung: Grobbritanien, Zentral- und 
Süd-Europa. 
Dilepis undula (SCHRANK) 
Anomotaenia constricta (MoLIN) 


Uhoanotaenia galbulae (ZEDER) ÜOHN 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


Corone corone Lin. 


Geographische Verbreitung: Europa, Nord-Asien, Nord- 
west-Indien, China. 


Die Cestoden der Vögel. 191 


Dilepis undula (SCHRANK) 
Anomotaenia constrieta (MOLIN) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


Corone levaillanti Less. 
Geographische Verbreitung: Indien, China, Ost-Sibirien. 


Dilepis modıglianiü (PAR.). 


Nueifraga caryocatactes (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Nord- und Zentral-Europa, 
Nord-Asien bis Nord-China. 


Dilepis undula (SCHRANK) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


Pica pica (Lisx.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien, Japan, 
Nord-China, Nordamerika. 


Dilepis undula (SCHRANK) 
Anomotaenia constrieta (MOLIN) 
Hymenolepis stylosa (RUD.) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 


Garrulus glandarius (Lins.). 
Geographische Verbreitung: Europa. 
Dilepis undula (SCHRANK) 
Hymenolepis stylosa (RUD.) 
Hymenolepis farciminosa (GOEZE) 
Hymenolepis serpentulus (SCHRANK). 
Perisoreus infaustus (LinN.). 
Geographische Verbreitung: Nord-Europa und Asien. 


Anomotaenia brevis (ÜLERC). 


Gracula (?). 
Fundort: Brasilien. 


Biuterina distineta FUHRMANN. 


192 O0. FUHRMAnN. 


Laniidae. 


?’ Vanga rufa GM. 
Geographische Verbreitung: Madagascar. 


Paruterina parallelepipeda RuD. 


Enneoctonus collurio Linn. 
Geographische Verbreitung: Europa bis Zentral-Asien, 
Persien, Arabien; im Winter Ost- und Süd-Afrika. 
Anomotaenia borealis (KRABBE) 
Paruterina parallelipipeda (RunD.). 
Lanius excubitor Linn. 
Geographische Verbreitung: Nord-Europa, Nord-Asien. 


Paruterina parallelipipeda (Run.). 


Lanius minor GM. 


Geographische Verbreitung: Südost-Europa, Zentral-Asien; 
im Winter Ost- und Süd-Afrika. 


Paruterina parallelipipeda (RuD.). 


Museicapidae, 


Hedymela atricapilla (Lisn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Persien; im Winter 
West- und Nordost-Afrika. 


Anomotaenia quadrata (RuD.) 
Hymenolepis interruplus OLERC. 


Hedymela collaris (Becusn.). 


Geographische Verbreitung: Zentral- und Süd-Europa, 
Mittelmeerländer. 


Anomotaemia quadrata (Run.). 
? Muscicapa audas. 
Fundort: Brasilien. 


Biuterina campanulata (Run.). 


Die Cestoden der Vögel. 193 


? Muscicapa columbina. 
Fundort: Brasilien. 


Biuterina campanulata (RuD.). 


Hirundinidae. 


Chelidonaria urbica (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Europa, Zentral-Asien; im 
Winter Afrika, Indien. 


Choanotaenia parvirostris (KRABBE) 
Anomotaenia depressa (V. SIEBOLD). 


Hirundo rustica Lisn. 


Geographische Verbreitung: Europa bis China; im Winter 
Afrika, Indien, Süd-China. 


C'hoanotaenia parvirostris (KRABBE) 
Anomotaenia ovolaeiniata (V. LINSTOW) 
Anomotaenia cyathiformis (FRÖLICH) 
Anomotaenia vesiculigera (KRABBE) 
Anomotaenia depressa (V. SIEBOLD) 
Angularia beema ÜCLERC.!) 
Hirundo sp. 
Fundort: Brasilien. 


Anomotaenia cyathiformis (FRÖLICH). 


Hirundo sp. 
Fundort: Brasilien. 


Anonchotaenia macrocephala FUHRMANN. 


Hirundella sp. 
Fundort: Brasilien. 
Anonchotaenia macrocephala FUHRMANN. 


1) CLerc 1906b sagt, daß er diese Art in einigen Schwalben des 
Urals gefunden, ohne die Artnamen derselben anzugeben; ich nehme an, 
daß es diese beiden auch in Rußland vorkommenden Arten waren. 

Zool. Jahrb., Supplement X. 13 


194 O. FuHRMmanN, 


Clivicola riparia (Lisz.). 


Geographische Verbreitung: Norden von Europa und 
Asien, Nordamerika; im Winter Afrika, Nordwest-Indien, Zentral- 
und Südamerika. 


Anomotaenia eyathiformis (FRÖLICH) 
Anomotaenia hirundina FUHRMANN 
Angularia beema ÜLERC!) 
Taenia colliculorum KRABBE. 
Progne chalybea (G1.). 


Geographische Verbreitung: Zentralamerika, Brasilien, 
Guyana, Venezuela, Bolivia. 


Anonchotaenia macrocephala FUHRMANN. 


Progne purpurea (Liss.). 


Geographische Verbreitung: Nordamerika bis Zentral- 
amerika; im Winter Brasilien, Cuba. 


Anonchotaenia macrocephala FUHRMANN. 


Progne tapera (Linn.). 
Geographische Verbreitung: Südamerika. 


Anonehotaenia macrocephala FUHRMANN. 


Atticora fasciata (Gn.). 


Geographische Verbreitung: Guyana, Amazonia, Ecuador, 
Peru, Bolivia. 


Anomotaenia undıulatoides FUHRMANN. 


Macrochires. 
Trochilidae. 


Eupetomena macrura (G1M.). 
Geographische Verbreitung: Ost-Brasilien. 


Anonchotaenia trochili FUHRMANN. 


1) s. vor. Seite Anm. 1. 


Die Cestoden der Vögel, 195 


Cypselidae. 


Cypselus melba (Linn.). 


Geographische Verbreitung: Süd-Europa, Nord-Afrika, 
Süd-Indien, Ceylon. 


Anomotaenia cyathiformis (FRÖLICH) 
Anomotaenia vesiculigera (KRABBE) 
Anomotaenia depressa (V. SIEBOLD). 


Cypselus streubeli (HARTL.). 
Geographische Verbreitung: Nordost-Afrika. 


Anomotaenia depressa (V. SIEBOLD). 


Cypselus apus (Lisn.). 
Geographische Verbreitung: Europa; im Winter Afrika. 


Anomotaenia eyathiformis (FRÖLICH) 
Anomotaenia vesieuligera (KRABBE) 
Anomotaenia depressa (V. SIEBOLD). 


Chaetura zonaris (SHAW.). 


Geographische Verbreitung: Zentralamerika, Süd- 
Brasilien, Ecuador, Peru. 


Anomotaenia cyathiformis (FRÖLICH). 


Cypseloides senex (TEmn.). 
Geographische Verbreitung: Brasilien. 


Anomotaenia ceyathrformordes FUHRMANN 
Anomotaenia paucitesticulata FUHRMANN. 


Mniotiltidae. 


Opornis formosa (WELS.). 


Geographische Verbreitung: Vereinigte Staaten bis 
Zentralamerika; Cuba. 


Taenia oporornis LEIDY. 
13* 


196 O0. Fuurnmann, 


Trogonidae. 
Trogon surucura \IEILL. 
Geographische Verbreitung: Uruguay und Paraguay. 


Anomotaenia brasiliensis FUHRMANN. 


Die Cestoden der. Vögel. 197 


Alphabetisches Verzeichnis der Vogelgruppen. 


Accipitres 11, 15, 142 
Anseriformes 11, 15, 147 
Aptenodytiformes 11, 14, 135 
Apterygiformes 11, 12, 99 
Casuariformes 11, 12, 99 
Charadriüiformes 11, 13, 107 
Ciconiiformes 11, 14, 137 
Coceygiformes 11, 15, 162 
Columbiformes 11, 13, 128 
Coraciiformes 11, 16, 163 
Crypturiformes 11, 12, 99 
Galliformes 11, 12, 100 
Gruiformes 11, 12, 106 


Barı?711,713,:123 
Otidiformes 11, 12, 106 
Passeriformes 11, 16 171 
Phoenicopteri 11, 15, 141 
Biere, 16, 169 
Podieipediformes 11, 14, 131 
Procellariformes 11, 14, 135 
Psittaciformes 11, 15, 159 
Ralliformes 11, 12, 105 
Rheiformes 11, 12, 98 
Steganopodes 11, 14, 136 
Strigiformes 11, 16, 167 
Struthioniformes 11, 12, 98 


198 


O0. FUHRMANN, 


Alphabetisches Verzeichnis der Familien, Genera 
und Arten sowie ihrer Synonyme. 


Die Synonyme und die zu streichenden Artnamen sind durch fetten Druck 
hervorgehoben. 


abbreviata, Taenia 97 
abortiva, Hymenolepis 78, 147 
Acanthoeirrus 29, 63 
acanthorhynchas, Tatria 90, 131 
Aeoleinidae 29, 85 

Acoleinae 13, 26, 31 

Acoleus 29, 85, 26 

acollum, Anomotaenia 58, 162 
acotylus, Dioicocesius 88, 131 
acuminala, Diorchis 81, 148, 7, 105 
acuminata, Drepanidotaenia 81 
acutissima, Taenia 76 
aequabilis, Hymenolepis 76, 147 
aequabilis, Dieranotaenia 76 
aequabilis, Taenia 76 
aegyptica, Choanotaenia 55, 107 
aegyptica, Taenia 55 

affinis, Taenia 58 
agama, Taenia 44 

alaudae, Mesocestoides 35, 171 
alaudae, Amerina 70 
alaudae, Taenia 70, 96 
alba, Aporina 39, 159 

alcae picae, Taenia 93 
alcae tordae, Taenia 97 
alternans, Fuhrmannia 59, 108 
alternans, Taenia 59 


ambigua, Moniezia 38, 159 
Amabilia 29, 88, 15, 27 
Amabilinidae 29, 88 
Amabiliinae 27, 31 
amadinae, Taenia 95 
ambiguus, Hymenolepis 73, 106 
Amerina 69 

Amoebotaenia 27, 60, 28 
amphigya, Taenia 94 
amphitricha, Hymenolepis 74, 108 
amphitricha, Taenia 74 
Amphoterocotyle 33 

anatina, Davainea 45, 147 

anatina, Hymenolepis 77, 147, 105, 7 
anatina, Dilepis 77 

anatina, Drepanidotaenia 77, 
anatina, Taenia 77 

anatis marilae, Taenia 77 
anatis B-lineata, Taenia 94 
anatis tadornae, Taenia 94 
Andrya 27, 28 

Angularia 29, 62 

angulata, Dilepis 52 

angulata, Hymenolepis 79 
angulata, Taenia 52, 79 
angustata, Paruterina 67 
Anomotaenia 28, 56, 13, 15, 16 


Die Cestoden der Vögel. 


Anonchotaenia 29, 69, 17 
Anoplocephala 27, 28 
anoplocephaloides, Taenia 94, 159 
Anoplocephalidae 27, 36 
Anoplocephalinue 27, 28, 36, 31 
anseris, Taenia 76 
anserum, Taenia 76 
Aphanobothrium 33 
Aploparaksis 29, 82, 13 
Aporina 28, 38 
appendiculata, Tatria 90, 131 
apterycis, Tuenia 92, 99 
apterygis, Choanotaenia 54, 99 
apterygis, Drepanidotaenia 54 
arcticum, Notobothrium 91 
arctieus, Tetrabothrius 35, 147 
arcuata, Hymenolepis 78, 148 
ardeae, Hymenolepis 75 
argentina, Taenia 50 
arionis, Anomolaenia 57, 107 
arionis, Choanotaenia 57 
arionis, Taenia 57 
armata, Hymenolepis 75, 129 
armatus, Acoleus 85, 86 
armigera, Taenia 84 
armillaris, Taenia 58 
arquata, Choanotaenia 55, 108 
aspera, Dioicocestus 7, 88, 131 
aspera, Taenia 88 
asymmetrica, C'hoanotaenia 56, 164 
attenuata, Dilepis 53, 172 
attenuata, Taenia 53 
aurila, Anomotaenia 58, 137 
aurita, Taenia 58 
auriculatus, Tetrabothrius 34 
australis, Davainea 43, 99 
australis, Taenia 43 
avicola, Cittotaenia 37, 146 
avieola, Dipylidium 65, 142 
avium, Taenia 65, 79 
bacilligera, Anomotaenia 57, 107 
bacilligera, Taenia 57 
bairdü, Taenia 95, 148 
baschkiriensis, Hymenolepis 74, 123 
ae Drepanidotaenia 
{% 
beauforti, Moniexia 38, 159 
beema, Angularia 62, 172 


199 


Berlia 27, 28, 36, 25, 30 
bilateralis, O’hoanotaenia 55, 131 
bicoronata, Dilepis 52, 137 
bilateralis, Hymenolepis 78, 148 
bilharzii, Hymenolepis 80, 173 
bilharzii, Taemia 80 
Biuterina 29, 67, 16 
biuterinus, Lateriporus 53, 147 
bifaria, Cotugnia 85 
bifaria, Taenia 85 
biremis, Tatria 89, 90, 131 
birostrata, Trichocephaloides 54, 107 
birulai, Aploparaksis 83, 148 
bisaccata, Hymenolepis 78, 148 
bobica, Anonchotaenia 71, 172 
borealıs, Ohoanotaenia 55, 147 
borealis, Aporina 55 
borealis, Anomotaenia 59, 172 
borealis, Taenia 59 
bothrioplitis, Taenia 44 
bothrioplitis, Davaimea 44 
Bothriotaenia 33, 42 
brachium globulosum, 
Taenia 54 
brachyarthra, Dilepis 53 
brachycephala, Hymenolepis 74 
brachycephala, Taenia 74 
brachyrhyncha, Davainea 44, 106 
brachyrhyncha, Taenia 44 
brachysoma, Taenia 84, 147 
brachyphallos, Aploparaksıs 82, 83, 108 
brachyphallos, Hymenolepis 83 
brachyphallos, Taenia 83 
brasiliensis, Hymenolepıs 78, 164 
brasiliensis, Anonchotaenia 71, 173 
brasiliensis, Anomotaenia 89, 172 
brasiliensis, Fuhrmannia 59, 169 
breviannulata, Hymenolepis 76, 137 
brevieollis. Amoebotaenia 60, 108 
brevicollis, Taenia 45 
brewrostris, Taenia 94, 137 
brevis, Amoebotaenia 60, 108 
brevis, Taenia 60 
brevis, Anomotaenia 59, 169, 172 
brevis, Choanotaenia 59 
brevis, Gryocoelia 87, 108 
brevis, Hymenolepis 80, 173 
Brochocephalus 86 


200 


calearia, Davainea 45, 162 

calva, Davainea 43 

calva, Taenia 45 

campanulata, Davainea 44, 100 

campanulata, Biuterina 68, 172 

campanulata, Taenia 68 

campanulata, Choanotaenia 54, 101 

campanulatus, Tetrabothrius 34, 133 

campanulatus, Prosthecocotyle 34 

campylacanlha, Anomotaenia 58, 122 

campylacantha, Taenia 58 

campylaneristrota, Dilepis 52, 76, 137 

campylaneristrota, Taenia 52 

candelabraria, Paruterina 67 

candelabraria, Halysis 67 

candelabraria, Taenia 67 

canlaniana, Davainea 43, 100 

cantaniana, Taenia 43 

captllarıs, Davarnea 43, 99 

capillarıs, Hymenolepis 75, 131 

capillaris, Taenia 75 

capellaroides, Hymenolepis 75, 131 

capitellata, Hymenolepis 75 

capitellata, Drepanido- 
taenia 75 

capitellata, Dilepis 75 

capitellata, Taenia 75 

capito, Oyclustera 61, 137 

capito, Taenia 61 

caprimulgi, Taenia 95, 164 

caprimulgorum, Hymenolepis 78, 164 

caprimulgorum, Dilepis 52, 164 

Capsodavainea 50, 42 

caracina, Taenia 96, 173 

carioca, Hymenolepis 73, 101 

carioca, Davainea 73 

caroli, Hymenolepis 76 

caroi, Taenia 76 

carrinor, Momiezia 38, 159 

carrinoi, Paronia 383 

carrinoi, Paronia ex parte 38 

catenatum, Aphano- 
bothrium 88 

cayennense, Monopylidium 66, 108 

cesticillus, Davainea 6, 43, 100 

cestieillus, Taenia 43 


1) s. Berichtigungen. 


O0. FUHRMAnN, 


chaotica, Taenia 55, 97 

Chapmania 28, 50, 42 

charadrii, Taenia 93 

charadrii, Halysis 86 

charadriihiaticulae, Taenia 
55 

charadrii himantopodis, 
Taenia 36 

cheilancristrota, Acanthocirrus 63, 137 

cheilaneristrota var. brevirostris, 
Taenia 63, 64 

cheilancristrota var. longi- 
rostris, Taenia 63, 64 

chlamydoderae, Taenıa 96, 173 

Choanotaenia 28, 54, 13, 27, 56 

chrysaeti, Taenia 35 

eingulata, Anomotaenia 57, 107 

cingulata, Dilepis 57 

cinguliferum, Monopylidium 66, 108 

einguliferum, Taenia 66 

circumwallata, Davainea 43, 100 

eircumvallata, Taenia 43 

circumeincta, Davainea 45, 137 

circeumeincta, Taenia 45 

eirrosa, Aploparaksis 83, 123 

cirrosa, Monorchis 83 

cirrosa, Taenia 83 

citrus, Anomotaenia 57, 107 

citrus, Choanotaenia 57 

eitrus, Taenia 57 

Oittotaenia 28, 37, 25, 27, 30 

Oladotaenia 29 

clandestina, Hymenolepis 74, 108 

clandestina, Taenia 74 

clausa, Hymenolepis 78), 148 

clausa, Skorikowia 82, 83 

clava, Anonchotaenia 70 

clavata, Taenia 71 

clavigera, Anomotaenia 57, 107 

clavigera, Taenia 57 

clavulus, Biuterina 68, 172 

clavulus, Taenia 68 

coccothraustis, Taenia 96 

Coelodela 37 

collari nigro, Taenia 77 

collaris, Hymenolepis 77, 147 


Die Cestoden der Vögel. 


collaris, Taenia 77 

eolliceulorum, Taenia 96, 173 

collini, Cotugnia 48, 99 

columba, Moniexzia 38, 128 
columbae, Davaimea 45, 128 
columbae, Alyselminthus 74 
columbae, Davainea 44 
columbae, Halysis 74 
columbae, Taenia 44 
columbae, Dipylidium 65, 129 
colymbi cornuti, Taenia 75 
colymbi cristati, Taenia 75 
compacta, Davainea 6, 46, 171 
compressa, Hymenolepis 77, 148 
compressa, Taenia 77 

conardi, Taenia 73 

conica, Anonchotaenia 70, 169 
conica, Taenia 94, 148 
conoidea, Taenia 65 
constricta, Anomotaenia 58, 172 
constrieta, Drepanidotaenia 59 
constricta, Taenia 58 
constriecta, Taenia 79 
Copesoma 30, 27 

Copesominae 30, 27 
coraciae, Hymenolepis 95 
coraciae, Taenia 95 
cornicis, Halysis 79 

coronalta, Choanotaenia 55, 107 
coronata, Taenia 55 

coronata, Taenia 93, 108 
coronina, Taenia 583 

eoronula, Hymenolepis 77, 147 
coronula, Dieranotaenia 77 
coronula, Taenia 77 

corvi cornicis,. Taenia 79 
corvi frugilegi, Taenia 79 
corvina, Davainea 46, 171 
corvorum, Taenia 79 
Cotugnia 28, 48, 27, 31 

crassa, Cotugnia 48, 101 

erassa, Quleitella 69, 142 
crassirostrata, Dilepis 52, 137 
crassirostris, Aploparaksis 82, 108 
crassirostris, Monorchis 82 
crassirostris, Dieranotaenia 82 
crassirostris, Taenia 82 
crassitestata, Ohoanotaenia 56, 169 


201 


crassula, Davainca 44, 6, 74, 128 

crassula, Taenia 44 

crassus, Acoleus 86, 108 

crateriforme, Monopylidium 16, 7, 66, 
169 

crateriformis, Taenia 66, 46, 56 

crateriformis, Halysis 66 

erenata, Taenia 46, 56, 66 

cerenata, Halysis 76 

crenatus, Alyselminthus 

crenulata, Taenia 84 

creplini, Hymenolepis 77, 147 

ereplini, Dieranotaenia 77 

creplini, Taenia 77 

cruciata, Davainea 46, 169, 56, 66 

cruciata, Taenia 46 

eryptacantha, Davainea 45, 128 

cryptacantha, Taenia 93, 109 

erypturi, Davainea 43, 99 

Ouleitella 29, 68, 15 

cumeata, Amoebotaenia 60, 101 

cuneata, Taenia 65 

cuathiformis, Anomotaenia 17, 58, 172 

eyathiformis, : Drepanidotaenia 
58 

cyathiformis, Taenia 58 

cyathiformoides, Anomotaenia 59, 172 

cyclocephala, Taenia 95, 162 

Cyclorchida 29, 63 

Oyelustera 28, 61, 15 

cylindriea, Biuterina 173 

cylindriea, Dilepis? 52, 123 

cylindrica, Taenia 94, 148 

cylindracea, Taenia 84, 142 

cylindraceus, Tetrabothrius 33, 123, 5, 6 

cylindracea, Prosthecocotyle 33 

eylindraceus, Bothriocephalus 33 

dahurica, Hymenolepis 80, 173 

dahurica, Taenia 80 

Davainea 28, 42, 12, 13, 27, 15, 
16, 30, 31 

Davaineidae 28, 40, 13 

Davaineinae 28, 41, 12, 13, 14, 27, 31 

dehiscens, Anomotaenia 59, 172 

dehiscens, Taenia 59 

delafondi, Bertia 36, 128 

delafondi, Taenia 36 

dendrocolaptis, Taenia 96 


76 


202 


dentatus, Hymenolepis 73 
depressa, Anomotaenia 59, 172 
depressa, Taenia 17, 59 
destituata, Taenia 95, 148 
diaphana, Taenia 84, 123 
diaphoracantha, Taenia 84, 135 
difformis, Davainea 45, 162 
difformis, Taenia 45 
digonopora, Cotugnia 48, 100 
digonopora, Taenia 48 
Dilepininae 31, 51 

Dilepinidae 28, 51, 12, 13, 31 
Dilepis 28, 51, 13, 14, 27, 30, 56, 72 
diminuens, Aploparaksıs 85, 108 
Dioicocestus 29, 14, 15, 26, 87 
diomedeae, Tetrabothrius 34, 133 
diomedeae, Prosthecocotyle 34 
diomedea, Taenia 34 
Diorchis 29, 81 

Diplacanthus 72, 82 
Diplochetos 56 

Diplophallus 29, 87 

Diploposthe 29, 85, 26 
Dipylidiinae 29, 64, 27, 31 
Dipylidium 29, 64, 27, 30 
discoidea, Anomotaemia 58, 75, 137 
discordea, Taenia 58 

dislineta, Biuterina 68, 172 
distineta, Taenia 93, 123 
dodecaniha, Choanotaenia 55, 123 
dodecantha, Taenia 55 
Drepanidotaenia 27,54, 72,82 
dujardini, Aploparaksis 83, 173 
dujardini, Taenia 83 

echinata, Taenia 92, 101 
echinobothrida, Davainea 44, 100 
echinobothridi, Taenia 44 
Eehinocotyle 80, 29, 27, 31 
echinoeotyle, Hymenolepis 78, 148 
elegans, Amphoterocotyle 34 
elongata, Davainea 43, 99 
elongata, Hymenolepis 76, 137 
emberizarum, Taenia 96 
embryo, Choanotaenia 55, 107 
embryo, Taenia 55 

Epision 90 

ericetorum, Anomotaenia 57, 107 
ericetorum, Taenia 57 


O0. FuHRMARN, 


erostris, Tetrabothrius 5, 6, 33, 123 

erostris, Prosthecocotyle 33 

erostris, Bothriotaenia 33 

erostris var. eudyptidis, 
Bothriotaenia 34 

erostris var. minor, Bothrio- 
taenia 34 

eudyptides, Tetrabothrius 34, 135 

eudyptides, Prosthecocotyle 34 

eurycephala, Taenia 97 

exarticulata, Taenia 97 

exigua, Taenia 96, 173 

exilis, Hymenolepis 73, 101 

exilis, Taenia 73 

fallax, Hymenolepis 77, 147 

fallax, Lepidotrias 77 

fallax, Taenia 77 

farciminalis, Taenia 79 

farciminalis, Diplacanthus 
7192060 

farciminosa, Hymenolepis 79, 173 

fareiminosa, Taenia 79 

fasciata, Hymenolepis 76, 147 

faseiata, Drepanidotaenia 76 

fasciata, Dilepis 76 

fasciata, Taenia 76 

fasciolaris, Fimbriaria 95, 
90, 97191 

faseciolaris, Taenia 91 

filiformis, Taenia 45, 94, 162, 6 

filirostris, Hymenolepis 76, 137 

filirostres, Taenia 76 

filirostris, Taenia 37 

filum, Aploparaksis 9, 82, 108 

filum, Monorchis 82 

filum, Hymenolepis 32 

filum, Diplacanthus 82 

filum, Monopylidium 832 

filum, Halysis 82 

filum, Taenia 82 

filum var. pseudofilum, Aploparaksis 
82, 108 

fiım var. polybori, Taenia 82 

Fimbriaria 29, 90 

Fimbriariidae 29, 90, 27 

fimbriata, Taenia 73 

flagellata, Hıymenolepis 78, 148 

flagellum, Idiogenes 49, 142 


148, 9, 


Die Cestoden der Vögel. 


flagellum, Halysis 49 
flavescens, Taenia 95), 148 
fragilis, Hymenolepis 77, 147 
fragelis, Taenia 77 
friedbergi, Davainea 44, 100 
friedbergi, Taenia 44 
fringillarum, Hymenolepis 79, 9, 95, 
173 
fringillarum, Aploparaksis 79 
fringillarım, Taenia 79 
früsiana, Taenia 93, 108 
frontina, Davainea 46, 169, 6, 16 
frontina, Taenia 46 
frustuleum, Taenia 97 
Fuhrmannia 28, 59 
fuhrmannt, Oyelustera 61, 137 
fulicae, Taenia 81 
fureifera, Hymenolepis 75, 131 
furerfera, Dilepis 75 
fureifera, Taenia 75 
fureigera, Aploparaksis 83, 94, 148 
fureigera, Dieranotaenia 83 
fureigera, Taenia 33 
fusus, Hymenolepis 74, 82, 123 
fusus, Taenia 74 
galbulae, Choanotaenia 5 
galbulae, Taenia 56 
galbulae, Halysis 79 
galli domestici, Taenia 97 
gallinaginis, Taenia 93 
gallınula, Taenia 92, 105 
gallinulae, Taenia 92 
gennaria, Taenia 55 
glandarii, Halysis 79 
glandularis Anomotaenia 58, 137 
globata, Anonchotaenia 70, 172 
globata, Taenia 70 
globifera, Cladotaenia 34 
globifera, Halysis 54 
globifera, Taenia 34 
globirostris, Davainea 44, 100 
globocaudata, Davainea 44, 100 
globocephala, Davainea 46, 171 
globosa, Biuterina 68, 172 
globulosa, Taenia 34 
globulus, Anomotaenia 57, 107 


1) s. Berichtigungen. 


203 


globulus, Choanotaenia 57 

globulus, Taenia 57 

gongyla, Choanotaenia 54, 55, 123 

goura, Davainea 45, 129 

gracilis, Hymenolepis 77, 147 

graeilis, Drepanidotaenia 77 

gracilis, Dilepis 77 

gracilis, Halysis 77 

graeilis, Taenia 77 

grandiporus, Idiogenes 49 

groenlandica, Hymenolepis 77, 147 

groenlandica, Taenia 77 

quevillensis, Davainea 44 

quevillensis, Taenia 44 

gutturosa, Taenia 58, 97 

Gyrocoelia 29, 86, 26 

haematopodis ostralegi, 
Taenıa 97 

hemignathi, Hymenolepis 80, 173 

hertwigi, Davainea 45 

heteracantha, Taenia 84, 152 

heteroclitus, Tetrabothrius 34, 133 

heteroeclita, Prosthecocotyle 34 

heterosoma, Taenia 34 

himantopodis, Hymenolepis 74, 108 

himantopodis, Taenia 74 

himantopodis melanopteri, 
Taenia 86 

hirsuta, Aploparaksis 82, 108 

hirsuta, Monorchis 32 

hirsuta, Taenia 82 

hirundina, Anomotaenia 59, 172 

hirundinis urbicae, Taenia 
58 

hoplites, Dilepis 52, 137 

hoplites, Taenia 52 

horridus, Idiogenes 49, 106 

Hıpmenolepinidae 29, 71, 13, 15 

Hymenolepis 29, 72, 12, 135, 14, 15, 
16, 27, 30, 31 

juncea, Prostherocotyle 35 

jJunceus, Tetrabothrius 35, 142 

Idiogenes 28, 49, 12, 27, 31 

Idiogeninae, 28, 48, 31 

imbutiformis, Mesocestoides 
94 


204 


imbutiformis, Taenia 94 
inaequalis, Ootugnia 48, 128 
inerescens, Taenia 93, 109 
inermis, Amerina 70, 71 
inermis, Metroliasthes 71 
inermis, Shipleya 87, 108 
inermis, Trichocephaloides 53 
innomminata, Taenia 96 
inflata, Diorchis 81, 105 
inflata, Dilepis 81 
inflata, Drepanidotaenia 31 
inflata, Hymenolepis 31 
inflata, Taenia 81, 92 
infundibuliformis, 
mvinthus 65 
infundibuliformis, Choano- 
taenia 65 
infundibuliformis, 
nidotaenia 65 


Alysel- 


Drepa- 


infundibuliformis, Halysis 
65 

infundibuliformis, Monopyli- 
dium 6 

infundibuliformis, Taenia 
43, 54, 65 


infundibuliformis var. pha- 
sianorum, Taenia 44 

infundibulum, Monopylidium 6, 65, 
101 

infundibulum, Choanotaenia 54, 
65 

infundibulum, Taenia 54, 65 

insignis, Davainea 45, 128 

insignis, Taenia 45 

insignis, Ophryocotyle 41, 107 

intermedia, Choanotaenia 55, 107 

intermedius, Hymenolepis 78, 162 

intermedius, Tetrabothrius 34, 133 

intermedia, Prosthecocotyle 34 

interruptla, Hymenolepis 74, 108 

interrupta, Taenia 74 

inlerruptus, Hymenolepis 80, 173 

intricata, Taenia 95, 164 

isacantha, Anomotaenia 59, 172 

ischnorhyneha, Leptotaenia 60 

ischnorhyncha, Amoebotaenia 60 

ischnorhyncha. Taenia 60 

inversa, Choanotaenia 55, 123 


O0. FUHRMAnN, 


inversa, Taenia 55 

krabbei, Taenia 84, 147 
kuvaria, Cittotaenia 37, 128 
kuvaria, Coelodela 37 

lacazei Ophryocotyle 41 
laevigata, Ohoanotaenia 65, 107 
laevigata, Taenia 55 

laevis, Diploposithe 85, 148 
laevis, Halysis 85 

laevis, Taenia 85 
lagenicollis, Taenia 66 
lamelligera, Amabilia 88 
lamelligera, Taenia 88 
lanceolata, Hymenolepis 76, 4, 7, 147 
lanceolata, Drepanidotaenia 77 
lanceolata, Dilepis 77 
lanceolata, Halysis 77 
lanceolata, Taenia 76 
lanceolata, Taenia 88 
lari cani, Taenia 93 
larina, Anomotaenia 58, 123 
larıina, Taenia 58 

lata, Polycoelia 47, 100 

lata, Linstowia 47, 24 
Lateriporus 28, 53 
Laterotaenia 28, 61, 15 
Lepidotrias 72 

leptacantha, Davainea 44, 100 
leptodera, Taenin 79 
leptoptili, Hymenolepis 76, 137 
leptoptili, Taenia 76 
leptosoma, Davainea 20, 45, 159 
leptosoma, Taenia 45 
Leptotaenia 28, 59, 15 

leuce, Gyrocoelia 86, 108 
leuckarti, Taenia 94, 137 

Liga 28, 60 

ligulordes, Hymenolepis 76 
liguloides, Drepanidotaenia 76 
liguloides, Dilepis 76 
liguloides, Halysis 76 
liguloides, Taenia 76 

Iimosa, Dilepis 52, 107 

linea Hymenolepis 73, 101 
linea, Halysis 73 

linea, Alyselminthus 73 
linea, Taenia 73 

lineata, Taenia 83, 94 


Die Cestoden der Vögel. 


linstowi, Zschokkea. 40, 100 
linstowi, Linstowia 40 
linstowi, Hymenolepis 40 
linstowi, Taenia 40, 48 
Linstowia 27, 28 
Linstowinae 28, 39, 31 
liophallos, Hymenolepis 77, 147 
hiophallus, Taenia 77 
lobata, Biuterina 68, 164 
lobata, Hymenolepis 78, 148 
lobata, Proorchida 62, 137 
lobatum, Tetrabothrius 34 
longieeps, Biuterina 68, 147, 172 
longiceps, Taenia 63 
longieirrosa, Chapmania 50 
longieirrosa, Hymenclepis 78, 148 
longieollis, Davarnea? 43, 100 
longieollis, Bothriotaenia 42, 43 
longiovata, Anonchotaenia 70, 71, 7, 
1320273 
longiovata, Amerina 70 
longirostris, Hymenolepis 94, 74, 108 
longirostris, Taenia 83 
longispieulus, Acoleus 86, 105 
longispieula, Bothriotaenia 86 
longispina, Davainea 46, 169 
longissima, Davainea? 48, 159 
longissima, Taenia 45, 94, 6 
longissima, Taenia 95 
longivaginata, Hymenolepis 78, 148 
loxiae, Halysis 96 
loxiae curvirostrae, Taenia 
96 
luceida, Metroliasthes 69, 101 
lutzü, Tetrabothrius 34, 135 
lutzi, Davainea 46, 169 
macracantha, Choanotaenia 56, 172 
macracantha, Anomotaenia 57, 107 
macracantha, Taenia 95, 148 
macracanthoides, Anomotaenia 57,107 
macracanthos, Hymenolepis 78, 147 
macracanthos, Taenia 78 
macracanthum, Monopylidium 66, 108 
macrocephala, Anonchotaenia 71, 173 
macrocephala, Dilepis 51, 106 
macrocephala, Taenia 97 
macrocephalus, Tetrabothrius 33, 58, 
12107, 131 


205 


macrocephala, Prosthecocotyle 34 
macrocephalus, Bothriocephalus 
33, 34 
macrocirrosa, Davainea 45, 162 
macropeus, Acanthocirrus 63, 137 
macropeus, Dilepis 63, 64 
macropeus, Dilepis 63, 64 
macrorhyncha, Schistotaenia 89, 131 
macrorhyncha, Taenia 89, 75 
macrorhyncha, Amabilia 89 
macrorhyncha, Drepanidotaenia 
89 
macrorhyncha, Amoebotaenia 90 
macrorostratus, Acanthocirrus 63, 64, 
172 
maceroscolecina, Davainea 45, 159 
macroscoleeina, Tetracysticotyla 91, 92, 
137 | 
maculata, Taenia 79 
magnieoronata, Davainea 46, 163 
malleus, Fimbriaria 91 
malleus, Alyselminthus 9 
malleus, Halysis 91 
malleus, Taenia 9 
marchali, Monopylidium 66, 105 
marchali, Taenia 66 
marchii, Taenia 66 
margaritifera, Taenia 35 
mastigodes, Taenia 97 
mastigophora, Idiogenes 49 
mastigophora, Taenia 49 
medici, Hymenolepis 75, 136 
mediei, Taenia 75 
megacantha, Choanotaenia 55, 164 
megacantha, Taenia 55 
megalluptera, Hymenolepis 77 
megalocephala, Trichocephalordes 53, 
107 
megalocephala, Taenia 53 
megalops, Hymenolepis 77, 147 
megalops, Taenia 77, 97 
megalorchis, Hymenolepis 76 
megalorchis, Dilepis 76 
megalorhımcha, Taenia 93, 109 
meleagris, Hymenolepis 73, .101 
meleagris, Drepanidotaenia 73 
meropina, Biuterina 68, 164 
meropina, Biuterina 68 


206 


meropina, Taenia 68 
meropina var. macrankisirota, 
uterina 68, 164 
Mesocestoides 27, 35, 26, 30, 
Mesocestoididae 27, 35 
Mesocestoidinae 26 
Metroliasthes 29, 69 
mieracantha, Anomotaenia 8, 58t), 123 
micracantha, Taenia 57 
micracantha, Davainea 45, 128 
micrancristrota, Hymenolepis 77, 147 
micrancristrota, Taenia 77 
microcephala, Hymenolepis 75, 137 
microcephala, Taenia 75 


Bi- 


31 


mierophallos, Anomotaenia 57, 107 
microphallos, Choanotaenia 57 
microphallos, Taenia 57 


mierops, Hymenolepis 73, 101 

microps, Tawenia 73 

mierosoma, Hymenolepis 77, 8, 74, 
123, 147 

microsoma, Taenia 77, 74 

mierorhyncha, Anomotaenia 56, 57, 
107 

microrhyncha, Taenia 56, 57 

mieroscolecina, Davainea 45, 159 

mieroscolecina, Hymenolepis 80, 173 

miceroscopica, Taenia 94 

minuta, Anomotaenia 56, 99 

minuta, Drepanidotaenia 56 

minuta, Davainea 44, 107 

minuta, Hymenolepis 74, 108 

minuta, Taenia 74, 75 

nritra, Fimbriaria 91 

modighianiti, Dilepis 53, 172 

modiglianü, Hymenolepis 53 

modiglianü, Taenia 53 

mollis, Anomotaenia 58, 142 

mollis, Taenia 58 

Moniezia 28, 37, 25, 27, 30 

Monopylidium 29, 65, 13, 27, 54 

Monorchis 82 

monticelli, Tetrabothrius 34, 133 

monlicelli, Prosthecocotyle 34 

moschata, Taenia 94, 148 

motaeilla, Biulerina 68, 172 


1) s. Berichtigungen. 


O0. FUHRMAnNN, 


motacilla cayamae, Taenia 96, 173 

motacilla brasiliensis, Taenia 96, 173 

motacilla provincialis, Taenia 96, 173 

multiformis, Hymenolepis 
75, 58 

multiformis, Anomotaenia 
75 

multiformiis, Taenia 75 

multistriata, Hymenolepis 75, 131 

multistriata, Dieranotaenia 75 

multistriata, Taenia 75, 64 

murticata, Taenia 97 

muscicapae, Taenıa 96, 173 

musculosa, Hymenolepis 73, 101 

musculosum, Monopylidium 65, 66, 
54, 79, 172 

musculosa, Davainea? 66 

mutabilis, Anomotaenia 58, 162 

mutabılis, Taenia 58 

mutabilıs, Davainea 44, 100 

naja, Hymenolepis 79, 173 

naja, Taenia 79 

nasuta, Dilepis? 52, 137 

nasuta, Taenia 95 

nattereri, Laterotaenia 62, 142 

natteri, Laterotaenia 62 

Nematotaenia 27, 29 

nigropunctata, Rhabdometra 69, 92,101 

nigropunclata, Taenia 69 

nilotica, Taenia 93, 108 

nitida, Hymenolepis (Eehinocotyle) 74, 
81, 108 

nitida, Echinocotyle 74 

nitıda, Taenia 74, 81 

nitidulans, Huymenolepis (Eechinocotyle) 
74, 81, 108 

nitidulans, Bcehinocotyle 74 

nitidulans, Taenia 74, 81 

nitzschi, Taenia 97 

nodosa, Taenia 79 

Notobothrium 90 

novae-hollandiae, Dioieocestus? 88,131 

novae-hollandiae, Taenia 88 

nymphaea, Anomotaenia 57, 107 

nymphaea, Halysis 57 

nymphaea, Taenia 57 


Die Cestoden der Vögel. 


nymphoides, Dilepis 5l, 107 
obvelata, Taemia 93, 128 
occlusa, Diorchis 76 
octacantha, Hymenolepis 77, 147 
octacantha, Drepanidotaenia 77 
octacantha, Taenia 77 
octacanthoides, Hymenolepis 74, 128 
octacantha, Drepanido- 
taenia 74 
odiosa, Taenia 92, 101 
oligocantha, Davainea 43, 99 
oligotoma, Taenia 55, 93, 97 
oligophora, Davainea 43 
oligorchida, Dilepis 52, 142 
Oligorchis 29, 71, 15 
omalaneristrota, Cyclorchida 63, 137 
omalaneristrota, Taenia 63 
Oochoristica 29, 25, 27 
Ophryocotylinae 31, 40 
Ophryocotyle 28, 40, 12, 13, 27, 31 
oporornis, Taenia 96, 173 
orientalis, Hymenolepis 80, 173 
orientalis, Taenia 80 
orioli galbuli, Taenia 
79 
oriolina, Anonchotaenia 71, 173 
orthacantha, Hymenolepis 78, 48 
otidis, Idiogenes 6, 49, 106 
otidis, Taenia 73 
ovolaciniata Anomotaenia 59, 172 
ovolaciniata, Taenia 59 
pachycephala, Hymenolepis 78, 147 
pachycephala, Taenia 78 
Panceria 29, 27 
papilla, Taenia 94, 137 
papilla, Drepanidotaenia 94 
papillata, Hymenolepis 78, 148 
papillifera, Dilepis 52, 137 
papilosum, Copesoma 91, 108 
paradisea, Davarnea 46, 171 
paradisea, Biuterina 68 
paradoxa, Choanotaenia 55, 107 
paradoxa, Drepanidotaenia 55 
paradoxa, Taenia 55, 74 
paradoxa, Taenia 93, 131 
paradoxa, Gyrocoelia 87, 108 
paradoxzus, Brochocephalus 87 
parallelepipeda, Paruterina 67, 172 


56, 


207 


parallelepipeda, Drepanido- 
taenia 67 

parallelepipeda, Taenia. 67 

parechinobothrida, Davainea 44, 100 


pari, Alyselminthus 95 
pari, Halysis 95 
parina, Choanotaenia 56, 172 


parina, Drepanidotaenia 56 
parina, Taenia 56 
parina, Hymenolepis 80, 173 
Paronia 37 
paronat, Dioicocestus 87, 88, 137 
Paruterina 29, 67 
Paruterinae 29, 66, 31 
parviceps, Diorchis 81, 148 
parviceps, Hymenolepis 81 
parvirostellata, Hhıymenolepis 78, 164 
parvirostellata, Drepanidotaenia 
78 
parvirostris, Ohoanotaenia 56, 172 
parvirostris, Taenia 56 
Parvirostrum 28, 61 
parvula, Hymenolepis 78, 148 
passerina, Biuterina 68, 173 
passerina, Hymenolepis 172 
passerinum, Monopylidium 66, 172 
passeris, Halysis 79 
passeris, Taenia 79 
pduciannulala, Choanotaemia 56, 164 
paueiovata, Hymenolepis 72, 99 
paueitestieulata, Davainea 45, 129 
paueitesticulata, Anomotaemia? 59, 
172 
pediformis, Taenia 95, 148 
pediformis, Taenia 91 
pelecani, Tetrabothrius 34, 136 
pelecani, Prosthecocotyle 34 
pellueida, Hymenolepis 80, 173 
penelopina, Davainea 44, 100 
penetrans, Aploparaksıs 83, 108 
penetrans, Monorchis 83 
penicillata, Anomotaenia 59, 172 
perdieis saxatilis, Tetrathyridium 92, 
101 
perlata, Halysis 35 
perlatus, Mesocestoides 35, 142 
perlatus, Taenia 35 
perverse, Gyrocoelia 86, 108 


208 0. FUHRMANN, 


pestifera, Taenia 96, 173 proglottina var. dublanensis, Davainea 
petroeinclae, Hıymenolepis 80, 173 43, 100 
petroeinclae, Taenia 80 Proorchida 29, 62 


pseudofilum, Monorchis 82 propeteres, Lateriporus 53, 147 
phasianina, Hymenolepis 73, 101 proteus, Ophryocotyle 40, 41, 9, 107, _ 


piei, Taenia 95 123 

pigmentata, Hymenolepis 77, 147 Prosthecocotyle 33 
pigmentata, Taenia 77 pseudofilum, Monorchis 82 
pinguis, Bertia 36, 163 psittacea, Oittotaenia 37, 159 
pintneri, Davainea 44, 100 psittaci, Taenia 94 

plana, Fimbriaria 91, 148 pubescens, Taenia 82!) 
planiceps, Taenia 96 puncta, Anomotaenia 58 
planirostris, Biuterina ? 68, 172 puncta, Taenia 58 
planirostris, Taenia 68 punctata, Liga 60, 61, 169 
platycephala, Taenia 95, 173 purpurata, Taenia 96, 173 
platyrhyncha, Anomotaenia 57, 107 pusilla, Taenia 79 
platyrhyncha, Taenia 57 pustulum, Taenia 59 
plicatus, Epision 91 pyramidalis, Hymenolepis 
pluriunecinata, Davainea 43 53 

poculifera, Hymenolepis 73, 105 pyramidalis, Taenia 96, 173 
poculifera, Taenia 73 pyramidalis, Hymenolepis 96 
podicipina, Hymenolepis 75, 131 pyramidalis, Taenia 96 
polyacantha, Cotugnia 48, 129 pyramidata, Taenia 96, 173 
polyarthra, Taenia 96, 173 pyriformis, Anomotaenia 57, 92, 105 
polycalcaria, Davainea 46 pyriformis, Taenia 57 
Polycoelia 28, 47 quadrata, Anomotaenia 58, 172 
polygramma, Hymenolepis 80, 173  quadrata, Taenia 58 
polygramma, Taenia 80 ralli, Taenia 92 
polymorphus, Diplophallus 87, 108 ralli, Halysis 92 
polymorpha, Gyrocotyle 87 rapacicola, Culeitella 69, 142 
polymorphus, Taenia 87 recapta, Dilepis 52, 107 
polyuterina, Davainea 44, 100 rectacantha, Hymenolepis 74, 108 


porosa, Choanotaenia 54, 55, 123 rectangula, Biuterina 68, 164 
porosa, Drepanidotaenia 55 recurvirostrae, Hymenolepis 74 
porosa, Taenia 55 recurvirostrae, Taenia 74 
porrigens, Tetrabothrius 35, 5, 134 reticulatum, Parvirostrum 61, 172 
porrigens, Prosthecocotyle 35 _retirostris, Dilepis 51, 107 


praecox, Taenia 96, 173 retirostris, Tarenia 51 
previceps, Taenia 71 retracta, Hymenolepis 78, 148 
produeta, Choanotaenia 56, 169 retusa, Davainea 44, 100 

producta, Taenia 56 Rhabdometra 29, 69 

proglottina, Davainea 43, 100 rheae, Cittotaenia 37, 98 

proglottina, Taenia 43 rhomboidea, Aploporaksis 83, 94 


1) KRABBE 1882 zeichnet unter dem Namen T. hirsuta eine Taenia, 
welche er im Text derselben Arbeit 7. pubescens nennt. Letzteres Synonym 
ist S. 82 anzugeben vergessen worden. 


Die Cestoden der Vögel. 


rhomboidea, Taenia 83 
rhynchopis, Choanotaenia 55, 123 
rosseteri, Hymenolepis (Eehinoecotyle) 
78, 81, 148 
rosseleri, Echinocotyle 78, 80 
rosseteri, Taenia 81 
rostellatum, Monopylidium 66, 108 
rostellata, Hymenolepis 75, 131 
rostellata, Halysis 75 
rostellata, Taenia 75 
rudolphiana, Taenia 71 
rugosa, Tnenia 93, 108 
rugosus, Hymenolepis 75, 129 
sagitta, Hymenolepis 78, 148 
sagitta, Drepanidotaenia 783 
Schistotaenia 29, 89, 14 
Schizotaenia 28 
scoleeina, Dilepis 52, 136 
seoleeina, Taenia 52 
scolopaeis, Taenia 93 
scolopendra, Schistolnenia 89 
scolopendra, Tatria 89 
scolopendra, Taenia 89 
secundum, Monopylıdıum 66, 108 
septaria, Hymenolepis 78, 164 
serpentata, Diorchis 83 
serpentiformis, Taenia 79 
serpentiformis, Taenia 57, 79 
serpentiformis turturis, 
Taenia 74 
serpentiformis 
Taenia 79 
serpentulus, Hymenolepis 79, 173,9, 17 
serpentulus, Diplacanthus 79 
serpentulus, Alyselminthus 79 
serpenlulus, Choanotaenia 54 
serpentulus, Choanotaenia 
56 
serpentulus, Halysis 79 
serpentulus, Taenia 79 
serpentulus, Taenia 52, 56, 79 
serrata, Hymenolepis 75, 129 
serrata, Taenia 65 
setigera, Hymenolepis 76, 147 
setigera, Drepanidotaenia 76 
seligera, Dilepis 76 
setigera, Halysis 76 
setigera, Taenia 76 
Zool. Jahrb., Supplement X. 


collaris, 


209 


seligerus, Alyselminthus_76 
Shipleya 29, 87 

sibirica, Hymenolepis 78, 147 
sibirica, Diorchis 78 
silicula, Taenia 93 
silieula, Halysis 93 
simpla, Taenia 95, 164 
simplex, Hymenolepis 78, 148 
sinuosa, Hymenolepis 77 
sinuosa, Drepanidotaenia 77 
sinuosa, Dilepis 77 
sinuosa, Halysis 77 


sinuosa, Alyselminthus 77 
sinuosa, Taenia 77, 83 
Skorikowia 82 

slesvicensis, Choanotaenia 55, 107 
slesvieensis, Taenia 55 

soctalis, Anomotaenia 58, 123 
soctalis, Taenia 58 

sp., Ophryoeotyle 147 

sp., Taenia 73 

sphaeroides, Davarmea 45, 142 


sphaerophora, Hymenolepis 74, 93, 108 
sphaerophora, Taenia 74 
sphenocephala, Hymenolepis 74, 129 
sphenocephala, Taenia 74 
sphenocephala, Taenia 36 
sphenoides, Amoebotaenia 60 
sphenoides, Dicranotaenia 
60 
sphenoides, Taenia 60 
spiculigera, Taenia 92, 97 
spiculigera, var. varsovien- 
sis, Taenia 92 
spinosa, Hymenolepis 74, 108 
spinosissima, Davainea 45, 171 
spinosissima, Taenia 46 
spinosus, Lateriporus 58, 54, 137 
stellifera, Choanotaenia 55, 107 
stellifera, Hymenolepis 55 
stellifera, Taenia 55' 
stentorea, Anomotaemia 57, 107 
stentorea, Taenia 57 
stercoreus, Globus 65 
sternae, Taenia 33 
sternae dougalli, Taenia 937 
sternae hirundinis, Taenia 
93 
14 


210 


siernina, C'hoanotaenia 55, 123 

sternina, Taenia 55 

strangulatus, Oligorchis 71, 72, 142 

striata, Taenia 97 

strigis, Taenia 67 

strigis acadiae, Tuenia 95 

Stilesia 27, 28 

struthionis, Davainea 43, 6, 19, 25, 
98 

struthronis, Taenia 43 

sturni, Taenia 79 

styloides, Hymenolepis 74, 108 

stylosa, Hymenolepis 79, 173 

stylosa, Taenia 79 

stylosus, Diplacanthus 79 

sulae fuscae, Taenia 34 

suigeneris, Diploposthe 85 

sulciceps, Tetrabothrius 34 

suleiceps, Hymenolepis 34 

Taenıia 29, 84, 27, 32, 82 

Taentinae 27 

Taeniidae 26, 29, 83 

tapika, chapmania 50, 106 

tapıka, Idiogenes 50 

tardae, Taenia 73 

Tatrıa 29 

Tatria 89, 14 

tauricollis, Chapmania 50, 98 

taurieollis, Idiogenes 50 

tauricollis, Davainea 42, 50 

taurieollis, Taenia 42, 50 

tenerrima, Hymenolepis 78, 147 

tenerrima, Taenia 78 

tenuwis, Hymenolepis (Echinocotyle) 74, 
81, 108 

tenuis, Echinocotyle 74 

tenuis, Taenia 35 

tenwirostris, Hymenolepis 76, 6, 7, 147 

tenwirostris, Drepanidotaenia 
76 

tenwirostrıs, Taenia 76 

teres, Laleriporus 53, 147 

teres, Taenia 53 

teresoides, Hymenolepis 78, 148 

tenuis nodis  instructa, 
Taenia 79 

Tetrabothrüdae 27, 32 

Tetrabothriinae 27 


O0. FUHRMANnN. 


tetrabothrioides, Taenıa 93, 109 
Tetrabothrius 27, 33, 13, 14, 15, 30, 
31 
Tetracisdieotyle 30 
tetracis, Hymenolepis 73, 106 
letragona, Davainea 43, 100 
tetragona, Taenia 43 
tetraonis, Hymenolepis 73 
tetraonis scotici, Taenia 97 
Thysanosoma 27, 28 
Thysanosominae 28, 31 
tichodroma, Hymenolepis 80, 173 
tomica, Rhabdometra 69, 92, 101 
tordae, Anomotaenia 58, 123 
tordae, Halysis 58 
tordae, Taenia 58 
torquata, Halysis 77 
torquata, Taenia 77 
torulosa, Tetrabothrius 34, 133 
torulosus, Prosthecocotyle 34 
totani, Taenia 93 
transfuga, Dilepis 52, 137 
transfuga, Taenia 52 
transverse elliptica, Taenia 
94 
trapexotdes, Biuterina 68, 164, 172 
Irapezxordes, Anomotaenia 58, 142 
triangula, Biuterina 68, 172 
triangula, Taenia 68 
triangularis, Taenia 97 
Trichocephaloides SINITZ. 27, 28, 30, 
53 
trichoglossi, Taenia 38 
trichosoma, Taenia 85 
trigonocantha, Biuterina 68, 172 
trigonocephala, Anomotaenia 59, 172 
trigonocephala, Taenia 59 
trifolium, Hymenolepis 78, 148 
trilineata, Halysis 94 
trilineata, Taenia 83 
tringae, Taenia 93 
Triplotaenia 28 
tritesticulata, Hymenolepis 78, 148 
trochili, Anonchotaenia 71, 173 
tuberecolata, Diploposthe 95, 148 
tubercolata, Ophryocotyle 85 
tubereolata, Taenia 85 
tumns, Taenia 73 


Die Cestoden der Vögel. 


turdi, Taenia 95 
turdi musici I, Taenia 95 
turdi musici II, Taenia 95 
turdorum, Taenia 79 
undula, Dilepis 51, 52, 79, 172 
undula, Taenia 52, 79 
undulata, Davainea 45, 162 
undulata, Dilepis 52, 79 
undulata, Hymenolepis 52 
undulata, Taenia 52, 79, 80 
undulatoides, Anomotaenia 59, 172 
uncinata, Hymenolepis 80 
unguicula, Taenia 64, 75 
unicoronatum, Monopylidıum 66, 172 
untlateralis, Dilepis 51 
unilateralis, Dilepis 52, 107 
unilateralis, Taenia 52 
unilateralis, Hymenolepis 75, 137 
unilateralis, Taenia 75 
untuterina, Davainea 46, 171 
umbrella, Tetrabothrius 34, 133 
umbrella, Prosthecocotyle 34 
uliginosa, Hymenolepis 74 
uliginosa, Taenia 74 
uralensis, Hymenolepis. (Echinocotyle) 
74, 81, 108 
uralensis, Echinocotyle 74 


211 


urceus, Dilepis 52, 137 

urceus, Taenia 52 

urnigera, Taenia 96, 173 

urogalli, Davainea 43, 100 

urogalli, Taenia 43 

vallei, Hymenolepis 74 

vallei, Taenia 74 

vanelli, Amoebotaenia 60, 108 

vanelli, Halysis 57 

vaginatus, Acoleus 4, 85, 86, 108 

vaginatus, Taenia 86 

varvabılis, Moniezia 38, 169 

variabilis, Choanotaenia 57 

variabilis, Taenia 57 

vesiculigera, Anomotaenia 17, 172 

vexata, Taenıa 95, 169 

viator, Taenıa 94, 142 

villosa, Hymenolepis 8, 10, 73, 101, 
106 

villosa, Halysis 73 

villosa, Taenia 73 

volvulus, Anomotaenia 57, 107 

volvulus, Diplochetos 57 

volzi, Davainea 44, 100 

xederi, Taenıa 93, 135 

xeylanica, Ophryocotyle 41, 163 

Zschokkea 28, 40 


14* 


212 0. FuUHRManN, 


Literaturverzeichnis. 


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1904b. —, Courte notice sur mes excursions zoologiques en 1903 et 
1904 (russe) 11 p. 

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(russe), 6 p. 

1906a u. b. —, Notes sur les Cestodes d’oiseaux de l’Oural I et II, in: 
Ctrbl. Bakteriol., Vol. 42, a) p. 433—436, 532—537, b) 713— 730. 

1907. —, Notes sur les cestodes d’oiseaux de l’Oural III. Quelques 
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genitaux de Schistotaenia macrorhyncha Rup., ibid., Vol. 43, p. 703 
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including on account of two experiments in regard to the breeding 
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cestoden siehe p. 164—165, tab. 33). 


1861 et 1869. —-, List of Entozoa, including Pentastomes, from animals 
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Vol. 26, p. 222—227. 

1899e. —, Zur Systematik der Vogeltaenien III, in: Zool. Anz., Vol. 22, 
p. 405 — 408. 

19002. —, Zur Systematik der Vogeltaenien IV, in: Ctrbl. Bakteriol., 
Vol. 27, p. 325 — 328. 


Die Cestoden der Vögel. 215 


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1898. —-, Ueber die weiblichen Geschlechtsteile der Davainea tetragona 


(MoLIn), eine kurze Antwort an Herrn Dr. HOLZBERG, ibid., Vol. 24, 
p. 480—483. 


216 O0. FuHrMmANN, 


1899a. DIAMARE, V., Ueber Amabilia lamelligera (OwEn), in: Otrbl. 
Bakteriol , Vol. 25, p. 357—359. 

1899b. —, Einige Bemerkungen zur Antwort an Herrn Dr. L. Coun, 
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1901. —-, Zur Kenntnis der Vogelcestoden (Ueber Paronia Oarrinoi mihi), 
ibid., Vol. 30, p. 369—373, 4 Fig. 
1850. DiesınG, K. M., Systema helminthum, Vol. 1, p. 478—608. 
1854. —, Ueber eine naturgemässe Vertheilung der Öephalocotylen, in: 
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1789. FRÖLICH, J. A., Beschreibungen einiger neuen Eingeweidewürmer, 
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1791. —, Beyträge zur Naturgeschichte der Eingeweidewürmer, ibid., 
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Die Cestoden der Vögel. >17, 
1802. FRÖLICH, J. A., Beyträge zur Naturgeschichte der Eingeweide- 
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1895. FUHRMANN, O., Beitrag zur Kenntnis der Vogeltaenien I, in: 
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1896. —, Beitrag zur Kenntnis der Vogeltaenien II, ibid., Vol. 4, 1896, 
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1897. —, Sur un nouveau Tenia d’oiseaux, ibid., Vel. 5, 1897, p. 107 
bier 117, Ip 

1898. ‚ Ueber die Genera Prosthecocotyle MONTICELLI u. Bothriotaenia 
LÖNNBERG, in: Zool. Anz., No. 561, 1898. 

1899a.. —, Das Genus Prosthecocotyle, in: Zool. Anz., Vol. 22, p. 180. 

1899b. —, Das Genus Prosthecocotyle, in: Ctrbl. Bakteriol., Vol. 25, 
3 Fig. 

1899e.. —-, Mitteilungen über Vogeltaenien, ibid., Vol. 26. I. Ueber 
T. depressa SIEBOLD, p. 83, 2 Fig. II. Zwei eigentümliche Vogel- 


taenien, p. 618. III. T. musculosa mihi u. T. crateriformis GOEZE 
(Monopylidium nov. gen.), p. 622. 


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1888a. ZSCHOKKE, F., Ein Beitrag zur Kenntniss der Vogeltaenien, in: 
Ctrbl. Bakteriol., Vol. 3, p. 2—6 u. 41-66, 3 Fig. 

1888b. —, Recherches sur la structure anatomique et histologique des 
Cestodes, Geneve. 


232 O. Funrmann, Die Cestoden der Vögel. 


1902. ZSCHOKKE, F., Hymenolepis (Drepanidotaenia) lanceolata BLocH als 
Schmarotzer im Menschen, in: Ctrbl. Bakteriol., Vol. 31, p. 331 bis 
335. 


1903. —, Die arktischen Cestoden, in: Fauna Arctica, Vol. 3, p. 20—24. 

1904. —-, Die Darmcestoden der amerikanischen Beuteltiere, in: Otrbl. 
Bakteriol., Vol. 36, p. 57— 59. 

1882. Zürn, Die Krankheiten des Hausgeflügels, Weimar 1882, 237 p., 
76 Fig. 

Berichtigungen. 

Seite 29, Zeile 21 statt Aymnolepis: Hymenolepis. 

Seite 38, Zeile 18 statt Coraciiformes: Pici. 

Seite 41, Zeile 21 statt Passeriformes: Coraciiformes. 

Seite 41, Zeile 8 von unten statt lacazii: lacazei. 

Seite 43, Zeile 15 von unten statt elava: calva. 

Seite 44, Zeile 20 statt CLERC 1906b: FUHRMANN 1908c. 

Seite 52, Zeile 9 zu streichen. 

Seite 55, Zeile 22: in Coraciiformes sind die Pici mit inbegriffen. 

Seite 56, Zeile 2 zu streichen. 

Seite 57, Zeile 18 A. micracantha zu streichen und auf S. 58 nach Zeile 6 
einfügen. 

Seite 57, Zeile 21 u. 22 statt macrocanthoides und macrocantha: maera- 
canthoides und macracantha. 

Seite 58, Zeile 7 von unten statt ubricae: urbicae. 

Seite 59, Zeile 7 statt ovalacincata: ovolaciniata. 

Seite 59, Zeile 11 von unten statt Coraciiformes: Pici. 

Seite 60, Zeile 1 von unten statt (Rup.): (RAILr.). 

Seite 61, Zeile 4 statt Coraciiformes: Pici. 

Seite 66, Zeile 4 zu streichen. 

Seite 67, Zeile 10 statt Aceipitres: Strigiformes. 

Seite 74, Zeile 11 zu streichen. 

Seite 74, Zeile 21 zwischen Zeile 14 und 15 einzuschieben. 

Seite 77, Zeile 2 statt sinuora: sinuosa. 

Seite 77, Zeile 18 statt Linstow: LinTon. 

Seite 78, zwischen Zeile 8 und 9 einschieben: Hymenolepis clausa 
v. Lınstow 1906. 

Seite 79, Zeile 13 von unten statt glandoriüi: glandarü. 

Seite 80, Zeile 6 statt dahmica: dahurica, 

Seite 80, Zeile 14 statt triehodroma: tichodroma. 

Seite 93, Zeile 5 statt Zetrabothroides: tetrabothrioides. 

Seite 95 zwischen Zeile 2 und 3 einfügen: Taenia flavesceens KREFFT 1873. 

Seite 96, Zeile 2 statt cayaneae: cayanae. 

Seite 96, Zeile 16 statt coracına: caracina, 

Seite 107, Zeile 13 zu streichen. 

Seite 169, Zeile 9 und Seite 170, Zeile 10 statt O'hoanotaenia: Anomotaenia. 


Lippert & Co. (G. Pätz’sche Buchdr.), Naumburg a. S. 


232 0. Funrmann, Die Cestoden der Vögel. 


1902. ZSCHOKKE, F., Hymenolepis (Drepanidotaenia) lanceolata BLocH als 
Schmarotzer im Menschen, in: Ctrbl. Bakteriol., Vol. 31, p. 331 bis 
335. 

1903. —, Die arktischen Cestoden, in: Fauna Arctica, Vol. 3, p. 20—24. 

1904. —-, Die Darmcestoden der amerikanischen Beuteltiere, in: Ctrbl. 
Bakteriol., Vol. 36, p. 57—59. 

1882. Zürn, Die Krankheiten des Hausgeflügels, Weimar 1882, 237 p., 
76 Fig. 

Berichtigungen. 

Seite 29, Zeile 21 statt Aymnolepis: Hymenolepis. 

Seite 38, Zeile 18 statt Coraciiformes: Pici. 

Seite 41, Zeile 21 statt Passeriformes: Coraciiformes. 

Seite 41, Zeile 8 von unten statt lacazii: lacazei. 

Seite 43, Zeile 15 von unten statt elava: calva. 

Seite 44, Zeile 20 statt CLERC 1906b: FUHRMANN 1908ec. 

Seite 52, Zeile 9 zu streichen. 

Seite 55, Zeile 22: in Coraciiformes sind die Pici mit inbegriffen. 

Seite 56, Zeile 2 zu streichen. 

Seite 57, Zeile 18 4A. micracantha zu streichen und auf S. 58 nach Zeile 6 
einfügen. 

Seite 57, Zeile 21 u. 22 statt macrocanthoides und macrocantha: maera- 
canthoides und macracantha. 

Seite 58, Zeile 7 von unten statt ubricae: urbicae. 

Seite 59, Zeile 7 statt ovalacıincata: ovolaciniata. 

Seite 59, Zeile 11 von unten statt Coraciiformes: Pici. 

Seite 60, Zeile 1 von unten statt (Run.): (RAILr.). 

Seite 61, Zeile 4 statt Coraciiformes: Pici. 

Seite 66, Zeile 4 zu streichen. 

Seite 67, Zeile 10 statt Aceipitres: Strigiformes. 

Seite 74, Zeile 11 zu streichen. 

Seite 74, Zeile 21 zwischen Zeile 14 und 15 einzuschieben. 

Seite 77, Zeile 2 statt sinuora: sinuosa. 

Seite 77, Zeile 18 statt Linstow: LinTon. 

Seite 78, zwischen Zeile 8 und 9 einschieben: Hhymenolepis clausa 
v. Lınstow 1906. 

Seite 79, Zeile 13 von unten statt glandorüi: glandarü. 

Seite 80, Zeile 6 statt dahmica: dahuriea. 

Seite 80, Zeile 14 statt trichodroma: tichodroma. 

Seite 93, Zeile 5 statt Zetrabothroides: tetrabothrioides. 

Seite 95 zwischen Zeile 2 und 3 einfügen: Taenia flaveseens KREFFT 1873. 

Seite 96, Zeile 2 statt cayaneae: cayanae. 

Seite 96, Zeile 16 statt coracina: caraeina, 

Seite 107, Zeile 13 zu streichen. 

Seite 169, Zeile 9 und Seite 170, Zeile 10 statt C'hoanotaenia: Anomotaenia. 


Lippert & Co. (G. Pätz’sche Buchdr.), Naumburg a. S.