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2» 1s Gattungs-Typus der Subfamilie gilt Bvassolis, Fabricius; fiir dieses Genus hatte
\Wy. Boisduval (1836) eine besondere Familie, Brassolides, aufgestellt. Im Jahre 1851 wendet
Y theme \)) Westwood den Namen Brassolidae in gleichem Sinne an, wahrend Doubleday bereits 1844
OF ) unter der Familie gleicher Bezeichnung eine Reihe von Arten auch anderer, spater
hierunter verstandener Gattungen vereinigte- Bates (1864) betrachtet diese Familie nach Westwood unter
Abanderung in Brassolinae als Unterfamilie der Nymphalidae in erweitertem Sinne mit Hinzufitigung der
von jenem Autor zu den Morfhidae gezahlten Gattungen Pavoma (rv. Caligo), Opsiphanes, Dynastor, Dasyoph-
thalma und Penetes. Dieselben Gattungen unter fernerer Einrechnung von Narofe vereinigt Herrich-
Schaffer (1864) als Brassolina, nachdem (1862) C. und R. Felder einen Teil der zugehérigen Arten zu den
Satyridae gestellt hatten. Spatere Autoren, wie Capronnier und C. Bar, gebrauchen in weiterem oder
engerem Sinne eines Tribus oder einer Familie die Namen Brassolides und Pavonides, wihrend Boisduval
(1870) fiir einen Teil der Gattungen und unter Abtrennung des Genus Evyphanis von Pavonia (ry. Caligo)
den Familiennamen Pavonides allein aufstellt. Als Familie Brassolidae werden die von Herrich-Schiaffer
zusammengefassten Gattungen einschliesslich Evyphanis von Schatz und Staudinger (1889) angenommen,
aber Kirby (1871), Godman und Salvin (1881), Haase (1891), Jordan (1898) u. a. wahlen die Bezeich-
nung Bvassolinae als Subfamilie der Nymphalidae im Sinne von Bates, und Reuter (1896) betrachtet die
hierher gehérigen Gattungen in ihrer Gesamtheit unter derselben Bezeichnung als Subfamilie der
Satyridaz, geht also in dieser Ansicht conform mit den Gebriidern Felder. Autor dieses, welcher (1901)
durch Aufteilung der Gattung Ofsiphanes ferner die Genera Opoftera, Selenophanes und Catoblepia
hier einreihte, wiirde sich dem Prinzip von Staudinger und Schatz anschliessen und Brassolidae wie
2 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Nymphalidae sens. strict. als coordinierte Familienbegriffe auffassen, wenn dieses die vorgeschriebene
Disposition des Gesamtwerkes nicht stérte. — Die Subfamilie umfasst hiernach endgiltig 17 Gattungen.
Die von Butler als Palaeontina nach einer fossilen Art (P. oolitica) autgestellte Gattung findet keine
Beriicksichtigung, weil das betreffende Insect nach Scudder (Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. ro, p. 235, 1875
u. Mem. Amer. Assoc. Sc. Vol. 1, p. 89, 1875) nicht zu den Lepidopteren gehért.
LITERATURNACHWEIS.
Brassolides. Boisduval, Spéc. gén. Lép. Vol. 1, p. 166 (1836).
Brassolites (u. Morphites part.). Blanchard, Hist. nat. Ins. Vol. 3, p. 453 (454) (1840).
Brassolidae. Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Vol. 1, p. 117 (1844).
Brassolidae (u. Morphidae part.). Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn.
ILED> Wola, 35a (Sa) (Gesu).
Brassolidae. \Vallace, in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 2, p. 261 (1853).
Brassolidae (u. Morphidae part.). Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Petersb , Lép. p. 39 (37) (1855).
Brassolitae (u. Morphitae part.). Chenu u. Lucas, in Encycl. Papill. p. 172 (164) (1858).
Brassolina, Herrich-Schiaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensburg, Vol. 18, p. 94, 98 (1864).
Brassolinae. Bates. in Journ. Ent. Vol. 2, p. 176 (1864).
Brassolinae. Butler, Cat. diurn Lep. Fabr. p. 39 (1869).
Brassolinae, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 125 (1871).
Brassolides (u. Pavonides). Capronnier, in Anu. Soc. Ent. Belg. Vol. 17, p. 28 (1874).
Brassolinae. Butler, in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 113 (1877).
Brassolides (ou Pavonides). C. Bar, in Ann. Soc, Ent. Fr. (5), Vol. 8, p. 20 (1878).
Brassolinae. Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 122 (1881).
Brassoliden. Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 190 (158g).
Brassolidae. Seitz, in Ent. Zeit. Stett. Vol. 51, p. 29 (1890).
Brassolinae. Haase, in Deutsche Ent. Zeit. ag (Iris) Vol. 4, p 33 (1891).
Brassolinae. Godman u. Salvin, in Whymper, Travels Great Andes, Suppl. App. Extr. p. 99 (1892).
Brassolinae. Chapman, in Ent. Record Vol. 6, p. 128 (1895).
Brassolidae (u. Gruppe oder Subfam. Pavonidae). v. Bonninghausen, in Verh. Nat. Ver. Hamburg,
Vol. 9, p. 37 (25, 40) (1896).
Brassoliden. Reuter, in Acta Soc. Sc. Fenn. Vol. 22, p. 111 (1896).
Brassolinae. Derselbe, eodem p. 553 (1896).
Brassolinae. Jordan, in Novit. Zool. Vol. 5, p. 389 (1898).
Brassolinae. Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. Vol. 1, p. 50 (1901).
Morphidae (part). Kollar, in Denkschr. Akad. Wiss. Wien, Vol. 1, p. 354 (1850).
Morphina. Herrich-Schiaffer, Exot. Schmett. p. 55 (1850-58).
Morphonides. Burmeister, in Rev. Zool. (3), Vol. 1, p. 17 (1873).
Morphinae (part). Butler, in The Entomologist, Vol. 33, p. 90 (1900).
Satyridae (part). C. u. R. Felder, in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 107 (1862).
Pavonides. Boisduval, Lép. Guatém. p. 53 (1870).
Allgemeine Charaktere. — Die Brassolinen sind Schmetterlinge von krifttigem Fliigel- und
Kérperbau, sehr verschiedener Grésse und mannigfaltigem Fliigelschnitt. Es zahlen zu ihnen
etliche nur mittelgrosse Arten (Navofe) aber auch die gréssten bekannten Rhopaloceren Siidamerikas
(Caligo) sowie solche aller Zwischenstufen. In gleichem Masse in ihrer Weise sind Farbung und Zeichnung
der Oberseite verschiedenartig und lassen sich bestimmte Erkennungscharaktere nicht definieren. Die
PAM. NYMPHALI DAE 3
Farben sind meist verwaschen und triibe, es gibt Vertreter mit brauner oder rétlicher Farbung ohne
oder mit sparlicher, ungewisser Schattierung, andere mit weisslichen, gelbbraunen oder roten Binden
und Flecken auf schwarzem oder dunkelbraunem Grunde. wieder andere von einténig ockerbraunem
oder weisslichem Fond mit dunklerem Saume, schwarzen, mehr oder weniger blau schillernden
Hinterfligeln und prichtig graublaue, hellbraun bandierte oder violettblaue, schillernde Falter von
resigen Dimensionen mit orangefarbener Fliigelspitze oder eben solchem Saume der Hinterfliigel.
Charakteristisch in vielen Fallen dagegen ist die Unterseite, woselbst mit wenigen Ausnahmen wenigstens
zwei grosse Augen auf dem Hinterfliigel stehen, das vordere zwischen Costalis und Subcostalis, das
andere, welches manchmal von einem kleineren Nebenauge begleitet wird, zwischen dem 1. und 2.
Medianast. Zuweilen sind diese Augentflecke oval, namentlich das vordere, ei-, nieren- oder bohnen-
iérmig; bei einigen Arten tritt zwischen beiden eine geschwungene vollstindige Reihe von Ocellen oder
Spiegelflecken auf oder auch ein einzelnes, meist blindes Auge zwischen den Radialen nahe der Zelle.
Im Apex des Vorderfliigels stehen in den meisten Fallen ebenfalls ein oder mehrere deutlich gekernte
kleinere Augenflecke. Die Grundfarbe der Fliigelunterseite ist bei den meisten Arten unregelmidssig in
sperberartiger Zeichnung gestrichelt und marmoriert, auf dem Vorderfliigel treten ausser den Zeich-
nungen der Oberseite helle oder dunkle unregelmdssige Querbinden und Linien auf oder ein breites
dunkles Transversalband zieht sich iiber einen oder beide Fliigel, die Ocellen des hinteren einschliessend.
Kopf und Kérper normal, haufig robust entwickelt. Bei den grésseren Arten erscheint letzterer
klein im Verhaltnis zu den Fliigeln. Die Augen sind gross, gew6lbt, nackt oder behaart, die dreigliedrigen
Palpen iiberragen in den meisten Fallen den Kopf, sind dicht beschuppt und verschiedenartig behaart.
An der Innenseite des Basalgliedes, niichst der Wurzel befindet sich ein chitindser schuppenloser Fleck,
der mit diinnen kegelférmigen, bei starker Vergrésserung fischgratenahnlichen Gebilden in parailelen
Reihen dicht besetzt ist (Taf. 2, Fig. 6). Die Fiihler sind diinn und schlank, spindelférmig oder
schwach keulenartig verdickt, gew6hnlich unter halber Linge der Costa. An ihrer Ventralseite sind
zwei Langsfurchen bemerkbar, welche durch feine kielartige Grade getrennt und begrenzt sind. In den
Rullen stehen, mehr oder minder spirlich, feine Harchen und einzelne, paarweise angeordnete Borsten
(Taf. 2, Fig. 7). Dorsal sind die Antennen meist nackt bis auf den Basalteil des Stieles, seltener beschuppt
(Navoge\. Vorderfiisse des G verkiimmert, mit eingliedrigem Tarsus, die des Q mit fiinfgliedrigem,
bedornten Tarsus (Taf. 2. Fig. 8 ig). Das Geidder ist kraftig, Vorder-und Hinterfliigel mit vollkommen
geschlossener Zelle, letzterer mit meist gut entwickelter, jedenfalls stets vorhandener Praecostalzelle.
Praecostalis einfach, wurzelwarts gekriimmt oder gerade nach vorn gerichtet.
Abweichend von der Lebensweise ihrer naichsten Verwandten sind alle Brassolinen Falter von
abendlichen oder niichtlichen Gewohnheiten; sie fliegen in der Regel bei und nach Sonnenuntergang und
in den friihen Morgenstunden schwer und taumelnd auf freien Waldwegen und auch in der Nahe der
Hauser, in den Strassen und Garten menschlicher Ansiedelungen. Der Geruch iiberreifer oder fauler
siisser Friichte(Bananen), bei einigen auch Licht und offenes Feuer, wirkt anlockend. Ihre Ruhe pflegen
sie mit zusammengeschlagenen Fliigeln an Baumstémmen, im Gebiisch auf Blattern, auch an Gebauden,
ja selbst in den Wohnhidusern, seltener setzen sie sich auf die Erde. Aber auch bei Tage sind etliche
Arten zuweilen an herabgefallenen Friichten gewisser Schmetterlingsbliitler u. a. saugend oder diese
umfliegend beobachtet. Die Falter sind dann schwer zu beschleichen und fliegen, auch wenn aus einem
Ruheplatz aufgescheucht. fast hiipfend, in grossen Sitzen, die Fliigel zusammenklappend ins Dickicht.
Nach Wallace, von Sommerfeld, von Prittwitz, Seitz u. a.).
Das Ei der Brassolinen ist, soweit bekannt, kugelig, fein. mehr oder weniger scharf gerippt, die
Raupen leben an Musaceen, Bromeliaceen (Musa, Banana, Olyra, Heliconia), eine Art der Gattung
Caligo wurde ausnahmsweise an Hedychium gefunden. Sie fressen des Nachts, ruhen meist bei Tage
und gewisse Arten sind dann an Bananenblattern in Anzahl hintereinander an der mittleren Liangs-
4 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
rippe des Blattes oder dicht gedrangt in Klumpen sitzend aufzufinden. Diejenigen der Gattung Brassolis
leben gesellig bis zu etwa 200 Stiick in einem grossen, derben sackartigen Gespinnst in einem Blatt-
winkel oder frei zwischen Blattern hangend. Sie weichen auch in der Gestalt etwas von denjenigen
anderer Brassolinen ab. Der KGérper derselben ist in der Mitte stark verdickt, nach beiden Langs-Rich-
tungen verjiingt, am Ende mit zwei kleinen warzenartigen Erh6hungen. Kopf langlich, unten breiter, nach
vornabfallend, kurz behaart, ohne Hérner oder Anhange. Die Raupen der tibrigen Gattungen besitzen am
Kopfe kranzartig verteilt 6-8 nach hinten gerichtete Hérner, meist 2 Paar grosse und 2 Paar kleinere,
die in der Jugend fehlen oder nur aus Héckern mit Borsten bestehen. Bei Eryphanis sind die vorhan-
denen 6 Auswiichse kiirzer, zapfenartig. Das hintere Ende der Raupe léuft beim erwachsenen Tiere in
eine lange Schwanzgabel aus, deren beide Zinken parallel stehen oder missig divergieren, beweglich
sind und zuweilen eng zusammengeschlagen werden, sodass sie den Eindruck nur eines einzigen
langen Hornes machen. Die Farbung des Kérpers ist griin, dunkler, auch rot, langsstreiffig, schmutzig
weiss oder braunlich, zuweilen mit kurzen dorsalen konischen Warzen oder Scheindornen (Caligo). Die
Raupen der Gattung Caligo erreichen eine Linge von 12 cm.
Die Puppe ist hangend, entsprechend der Grésse der Falter meist massig und plump, das untere
(Kopf-) Ende entweder kuppenartig gew6lbt (Brassolis) oder etwas verbreitert, kantig. K6rper mit starker
Fliigel- und vorspringender Riickenkante. Oberflache glatt oder die Mittel-Segmente dorsal bei gewissen
Arten mit kurzen Borsten; bei einigen Arten (Dynastor) sind die Fliigelscheiden lateral stark verbreitert.
Die Puppe besitzt nur eine bewegliche Segmentverbindung, die eine Bewegung nach allen Seiten zulisst.
Die Farbe ist schmutzig weiss bis rotbraun, schwarz streifig und punktiert, unterhalb der Fliigelkante
in der Regel und soweit bekannt beiderseits ein silber- oder goldglanzender Fleck. Bei der Gattung
Narope sind die hinteren Segmente ventral stark eingedriickt, dorsal rundlich gewélbt mit 3 Héckern
besetzt. Zwei weitere Hécker an der Fliigelwurzel, am Kopfe zwei kurze Hérner. (Nach Burmeister,
I. Miller, Chapman).
UEBERSICHT DER GATTUNGEN (1)
1. — Subcostalast r verkiimmert, mit dey Costalis ganz oder teilwerse
verwachsen, S C 2 und 3 in den Costalvand und Apex, S C 4
und 5 in den Aussenvand miindend. Gf mit kleinem elliptischen
Dufichuppenfleck auf blankey Reibefliche zwischen Costalis und
Subcostalis des Hinterfliigels, oder mit kleinem, im hintcren Teil
dey Zelle entspringenden, in einer Falte an der H M verborgenen
Haarpinsel. Kleinere, meist diister einfarbige oder wenig
BOLMNRIHO INGE 5 5 66 6 © ee) eee oe Genus sNAROPES Westwood:
Swbaasuals 00 S jfPOUdD ACHOD CISURYONG 5 6 5 6 6 0 5676 56 6 8 6 8 ob oe ee ol 8 De
2. -— Praecostalzelle des Hinterfliigels sehy klein, meist elliptisch,
CORA TES: CIDEAS IEA) GR Pe oe ST SIS ee Aetna howe UH Nahe tia Ae og ca a's o Os
Praecostalzelle stivker entwickelt, deutlich vrhombisch oder rhom-
nas” 3.5. ye SRp. eRe Oe ee eee Lee SAL Tel bof
3. — Zelle des V orderfliigels swischen H R und V M stark vortretend
M D C stark winklig gegen den Aussenvand gebogen, H DC
fast rvechtwinklig zu V M gestellt. Unterseite des Hinterfliigels
mit 2 grossen Augen. Gf mit blanker Retbefldche beiderseits dev
SM des Hinterfliigels mit auch ohne Hlaarpinsel. . . . . it. Genus Carico, Htibner.
(r) Bezeichnung des Geiders, um die vorgeschriebene Disposition des Werkes nicht zu stéren, im Sinne von Schatz, wernngleich die Teilung des
tadialen und medianen Adersstammes in dieser Weise genetisch nicht haltbar ist. Zum Median- Stamm gehéren vielmebr nur H M und M M (nach
Schatz: M rund M 2’, zum Radial- Stamm dagegen die 3 Aeste V M, H Rund V R (M3, U R, O R nach Schatz).
FAM. NYMPHALIDZ 5
Zelle des Vorderftiigels distal hinten weniger vortretend, M DC
nur schwach gekriimmt, H DCschrég in VM laufend, Unterserte
des Hinterjtiigels hinter der Zelle metst mit einem Doppelauge.
ot mit grisserem oder kleinerem linglichen, filzigen Duftschuppen-
Fleck auf grauglinsender Flache im Analteil des Hinterfliigels. to. Genus Erypuanis, Boisduval.
4. — Unterseite des Hinterfliigels fast einfarbig, ohne Augen-oder
Fleckzeichnung, Apex des Vorderfliigels stark vortretend,
Aussenvand konkav eingebuchtet. . . . . . . . . . 4. Genus PENETES, WEsTwoop.
Unterseite des Hinterfliigels sperbevartig oder marmoriert gezetch-
net, mit Augen oder Spiegelflecken, teils nieren-oder bohnenformig. . . . . . . . . .. .. Sz
. — Palpen stumpf, kurz, nicht iiber den Kopf hinausragend, & ohne
Haarpinsel oder sonstige dussere geschlechtliche Auszeichnungen
auf dem Hinterfliigel. . .) . Se Se ee Ge scat URS ate dee eam
Palpen iiber den Kopf hinausragend, mut eee oder
Biischel an der S M, in der Zelle oder an der SC des Hinter-
Jliigels, oder mit taschenartiger Falte der Membran an H M
nachst der Zelle . . . SHICNGH tegen aie ore Picks cay tyres tt ener aE
6. — Antennen distal kolbig verdickt, Zale des Vereen ae
liber halbey Fliigellange. H D C schrig nach aussen gestellt.
Vorderfliigel schlank, Apex abgerundet spitswinklig . . . . 1. Genus Brassotis, Fabricius.
Antennen distal hichstens schwach verdickt, spindelartig. Zelle des
Vorderfliigels brett, nicht so langals diehalbe Fliigellange, H DC
quergestellt, Vorderfliigel breit, Apex slumpf- oder rechtwinklig. 2. Genus Dynasror, Westwood.
7. —S C3 des Vorderfliigels lauft in den Apex, Gabel der SC 4
und 5 hintey demselben in den Aussenrand, Augen behaart, Hin-
terfliigel beim cf mit einem etfirmigen Duftschuppenjleck an der
S C und dariibey liegendem Haarpinsel. . . . . 4. Genus DasyopHTHALMA, Westwood.
S C 3 des Vorderfliigels gewihnlich in den Vorderrand, S C4
in den Apex miindend, Augen nackt . . . ALENT RAC MC l iy AR rae EN Mme Bas {35
8. — Praecostalzelle des Hinterfliigels langer als brett, Palfen ee
pig behaart. . . . pes ic 7. Genus OpopTera, Aurivillius.
Praecostalzelle des Hinterfligels bretter als Les Palpen Ae Ey Ms, Poet Aaah) esah cs Sat anaes
9. — Vordere und hintere Ecke der Vorderfliigelzelle etwa in gleichem
Abstand von der Fliigelwurzel. V DC und M D C scharf recht-
winklig zu emander gestellt. . . . . . . . . . . Q, Genus SELENOPHANES, Staudinger.
Zelle des Vorderfligels vorn schief abgeschlossen, nicht gewinkelt,
vorderes Zellende wesentlich niher zur Wurzel als die weit vor-
springende hintere Ecke. VD C und M D C fast in einer Rich-
tung verlaufend oder nuy schwach winklig zu emandey . . . . . . ». . +... + ~. - = IO,
10. —SC und C des Vorderfliigels durchweg schmal aber deutlich
getrennt, ohne wesentliche Divergenz. H M und M M gestreckt,
parallel oder fast parallel verlaufend . . . . . . . . 8. Genus CarTosLepia, Stichel.
S C proximal merklich von der Costalis abgewendet, diese sodann
in flachem Bogen nach vorn beriihrend und teilweise derselben
ong anliegend. M M mehr oder weniger gekriimmt, ziemlich nahe
an H M entspringend, mit dieser wesentlich divergievend . . 6. Genus OpstpHANEs, Westwood.
6 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
i. GENUS BRASSOLIS, FABRIciusS
Brassolis. Fabricius, Syst. Gloss. M. S. publ. : Illiger in Mag. Ins. Vol. 6, p. 282 (part.) (1807);
Hiibner, Verz. Schmett. p. 50 (part.) (1816); Latreille, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p.
Godart, Enc. Méth. Vol. 9, p. 456 (1819); Griffith, Anim. Kingd. Vol. 15, p. 590 (1835); Lucas,
Hist. Nat. Lép. Exot. p. 142 (1835); Blanchard, Hist. Nat. Ins. Vol. 3, p. 453 (1840); Doubleday,
List Ins. Brit. Mus. Vol. 1, p. tog (1844); Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson,
Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 353 (1851); Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 172 (1858);
Herrich-Schiaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 18, p. 98, Sep. p. 56 (54) (1864); Herrich-
Schaffer, eodem, Vol. 19, p. 64 (part.) (1865); Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 41 (1869);
Crotch, in Cist. Ent. Vol. 1, p. 66 (1871); Kirby. Cat. diurn. Lep. p. 125 (1871); Burmeister,
invNeveyZooly (3); Viol! asp. 45 (0873) Scudder, in Proc) Amen, Acad} ScyaViole) 10;.ps 29;
n° 175 (1875); Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1. p. 124 (1881); Schatz
(Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 191 (1889); Reuter, in Acta Soc. Sc. Fenn. Vol. 22,
p. 111 (1896); Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 519 (1901).
Megastes. Boisduval, Lép. Guatém. p. 53, (part.) (Dynastor u. Brassolis) (1870).
Allgemeine Charaktere. — Kopf miassig gross, Augen gewélbt, nackt. Stirn stark behaart.
Palpen dicht beschuppt, glatt behaart, eng an dem Kopf anliegend, diesen nicht iiberragend. Basal-
ghed kurz, stark gekriimmt, Mittelglied viel langer, anfangs aufwarts gebogen, dann gerade nach oben
gerichtet, Endglied sehr kurz, distal zugespitzt. Antennen kraftig, unter halber Lange des Vorderfliigels,
gegen die Spitze schwach aber deutlich stumpf-keulenférmig verdickt. Thorax robust, reichlich schlicht
anliegend behaart. Abdomen kurz, spitz, lang behaart, beim co ohne seitliche Reibewiilste. Vorderfliigel
abgestumpft dreieckig, Vorderrand schwach gekriimmt, Apex ziemlich scharf, Aussenrand schwach
konkav, Analwinkel abgerundet rechtwinklig, Hinterrand fast gerade. Costalis schwach geschwungen,
am letzten Viertel des Vorderrandes auslaufend, in ganzer Linge von der Subcostalis schmal getrennt;
letztere 5astig. Subcostalis 1 und 2 entspringen in unmittelbarer Nahe unter sich und in kurzer Entfernung
vor dem Zellende und miinden unweit des Apex in den Vorderrand, Subcostalis 3 kurz, in betrachtlicher
Entfernung hinter dem Zellende abgezweigt, ebenfalls in den Vorderrand, Subcostalis 4 und 5 bilden
eine kurze Gabel, erstere in den Apex, letztere dicht hinter diesem auslaufend. Zelle ziemlich schmal,
etwa von halber Linge des Fliigels, distal schief von vorn nach hinten abgeschnitten. V DC kurz
aber deutlich, M DC schwach gekriimmt, etwas langer, beide annahernd in gleicher flach schrager
Richtung gelegen, H D C ein wenig langer als die vorige, etwas steiler, zu der Mediana fast rechtwinklig
gestellt. S M parallel zum Hinterrand. H M und MM an der Wurzel niaher als M M und VM. Die
beiden ersteren gegen den Aussenrand divergierend, die letzteren annahernd parallel, V M jedoch
anfangs starker gekriimmt. Hinterfliigel etwa elliptisch, Apex véllig abgerundet, Aussenrand leicht
gewellt, Analwinkel etwas deutlicher markiert. Hinterrand gerade, vorn stark gelappt, den Leib
umschhesend. Costalis stark gekriimmt, in den Apex auslaufend, Zelle schmal, tiber halber Lange des
Fliigels. M DC etwas linger als V DC, beide in gleicher, schrager Richtung, schwach S-férmig
gekrimmt. H D C steiler schrag nach hinten, etwa von der Linge der V DC. Praecostalzelle miassig
entwickelt, langer als breit, rhomboidal. Gt ohne dussere geschlechtliche Auszeichnungen in Gestalt
von Haarbiischeln, Biirsten oder Taschen.
Schema des Fliigelgeiders. — Taf. |, Fig. 1.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Arten dieser Gattung leben hauptsachlich in
dem tropischen Giirtel Siid-Americas. Siidlich dehnt sich das Verbreitungsgebiet einzelner Arten bis
Paraguay und Argentinien, nérdlich durch Central-America bis Mexico aus.
FAM. NYMPHALIDA a
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN (2)
1. Brassolis sophorae Linné.
2. Brassolis sophorae sophorae Linn¢c.
sophorae, Linné, Syst. Nat. 10), p. 471, n° 83 (1758).
Papilio sophorae. Linné, Mus. Lud. Ulr. p. 266 (1764),
Papilio sophorae, Clerck, Icon. Ins. t. 35 (fig. typ. 2) (1764).
Papilio sophorae, Cramer, Pap. Exot. Vol. 3, t. 253, f. A-C (1782).
Brassolis sopherae, (Fabricius M. S.), Illiger, Mag. Ins. Vol. @, p. 282, n° 16 (1807).
Brassolis sophorae, Godart, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 457, n° 1 (1819).
R
Brassolis sophorae, Sepp, Surin. Vlind. p. 309, t. 143 (biol.) (1848).
Brassolis sophorae, \WWestwood (u. Hewitson) in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. t. 59,
f. 2 (1849).
Bras. ofhorae, Burmeister, in Rev. Zool. (3), Vol. 1, p. 46 (biol.) (1873).
Brassolis sophorae, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 72 (1882).
Brassolis sopkorae, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 211, t. 71 (1887).
Papilio rufescente-fuscus, Goeze, Ent. Beitr. Vol. 3 (), p. 223, n° 87 (1779).
Guayana bis Siid-Brasilien.
5. Brassolis sophorae lurida Stichel.
Brassolis sophorae luridus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 520.
Columbien.
c. Brassolis sophorae vulpeculus Stichel.
Brassolis sophorae vulpeculus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 520 (1901).
Paraguay.
d. Brassolis sophorae ardens Stichel. — Taf. 3, Fig. |.
Brassolis sophorae ardens, Stichel, in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 389, n° 1 (1903) (2).
Siid-Peru.
2. Brassolis astyra Godart.
a. Brassolis astyra astyra Godart.
Brassolis astyra, Godart, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 457, n° 2 (1819).
Brassolis astyra, Boisduval, Spéc. Gén. Lép. Vol. 1, t. 13, f. 2 (fig. typ.) (1836).
Brassolis astyra, Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen diurn. Lep. t. 59, f.1 (1849).
Brassolis astyra, Miller, in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 602 (biol.) (1886).
Brassolis astyra, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol.-1, p. 211, t. 71 (1887).
Castnia langsdorfii, Ménétries, in Nouv. Mém. Soc. Imp. Nat. Moscou, Vol. 1, p. 192, t. 5 (1829).
Brassolis astyalus, Burmeister, in Rev. Zool. (3), Vol. 1, p. 46 (1873).
Brasilien : Espirito-Santo, Santa-Catharina.
). Brassolis astyra philocala Stichel.
Brassolis astyra philocala, Stichel, in Ins. Boérse, Vol. 21, p. 21, n° 16 (1904) (3).
Brasilien : Rio-Grande do Sul.
(t) Die Literatur-Citate erstrecken sich aut die erste Diagnose der Form und auf spiitere wichtigere Schriftstellen, namentlich solche, in denen
die Form mit dem jetzt gilligen Gattungsnamen zuerst verzeichnet worden ist, oder solche, in denen eine ausfiihrlichere Beschreibung der Imago oder
ibrer Entwicklungsstadien gebracht wurde, oder welche von einer Abbildung begleitet sind.
(2) Brassolis sophorae ardens. — A Br. sophorae typ. diflert fascia alarum fulva multo latiore, plus minusve effuente : anticarum colore
pallidiore in cellulam, posticarum colore ardenter rubiginoso in aream analem versus cellulam.
Binde des Vorderflagels breiter als bei der typischen Form, an der Costa weisslich, demniichst fahl gelb, hinten rétlich. Hinterfligel mit
breiter, etwas gewellter submarginaler Binde oder breit bindenartig zusammenhingenden Halbmonden von feurig rostroter Farbe. Im Analwinkel ist
diese Binde tribe fleckartig verbreitert oder lings HM streifenartig nach vorn ausgeflossen. Unterseite wie bei 2. sophorae sophorac, in einem Falle liegt
indes zwischen der vorderen Ozelle des Hinterfliigels und dem Mittel-Fleck cin weiterer, schriig gestellter ovaler Augenfleck, der innen etwas weiss
betupft ist, undin den nachsten beiden Aderzwischenraumen erscheinen zwei weit re Ringflecke, so dass eine fast vollkommene geschwungene mediane
Anugenreihe yorbanden ist. Vorderfliigellange 40-43 mm. Typ. in coll. Thieme (Berlin) und Stichel.
(3) Brassolis astyra philocala, G.— Differt optime a forma typica supra colore non atro sed fuliginoso, alarum anticarum fascia bifurcata
vivacius ferruginea, alarum posticarum fascia rubiginosa splendida submarginali lunulata, versus cellulam inter venas plus minusve radialiter effluente ;
subtus omnino multo pallidior.
Grandfarbe nicht so intensiv schwarz wie bei der typischen Form, sondern briunlich. Gabelbinde des Vorderfliigels dagegen lebhaft rostfarben.
Hinterflagel mit einer prachtig rostbraunen Submarginalbinde, aus mehr oder weniger gefillten Halbmond- oder Keilflecken zusammengesetzt, ahnlich.
wie bei Brassolis sophorac, aber die einzelnen Flecke viel charakteristischer gcformt und gegen die Zelle mehr oder minder strahlenformig ausgeflussen.
Unterseite bleicher; die vordere und mittlere rostfarbene blinde Ocelle in der Regel voll ova!, fein schwarz gerandet; der hintere Augenfieck sehr
deatlich yon der Grundfarbe abgesetzt, innen olivbraun, schmal schwarz und etwas breiter rostrot geringt. Im hinteren Teil der Zelle, vor dem Ursprung
der HM, ein dhnlicher rostfarbener Fleck wie in der Zellbasis. Vorderfliigelliange 44-45 mm. Typen in coll. Staudinger (und Bang-Haas), Dresden
und Stichel.
8 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
3. Brassolis haenschi Stichel.
a. Brassolis haenschi haenschi Stichel.
Brassolis haenschi, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 520, t. 8, f. 2 (fig. typ.) (1902).
Ecuador.
+. Brassolis haenschi maritima Stichel.
Brassolis haenschi maritimus, Stichel, in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 389, n° 2 (1903) (1).
Venezuela.
4. Brassolis isthmia Bates.
Brassolis isthmia, Bates, in Ent Mag. Walker, Vol. 1, p. 164, n° 67 (1864).
Brassolis isthmia, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 125, t. 12, f. 5-8 (fig. typ.) (1881).
Central-Amerika, Columbien.
5. Brassolis granadensis Stichel.
Brassolis granadensis, Stichel, in Berl, Ent. Zeit. Vol. 46, p. 521, f. 4 (fig. typ.) (1902).
Columbien, Ecuador.
2. GENUS DYNASTOR, WESTWOOD
Dynastor. Westwood (u. Hewitson) (Boisduval M. S.), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen.
diurn. Lep. t. 58, f. 2 (1849) (2); Westwood, eodem, Vol. 2, p. 346 (1851); Ménétries, Cat. Acad.
Imp. St-Pétersb. Lép. Vol. 2, p. 38 (1857); Chenu u. Lucas, in Encycl. Papill. p. 170 (1858);
Herrich-Schaffer, in Corr. Blatt. Ver. Regensb. Vol. 18, p. 98 [Sep. p. 56 (54)] (1864); Butler,
Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 40 (1869); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 127 (1871); Scudder, in Proc.
Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 160, n° 362 (1875); Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop.
Vol. 1, p. 122 (1881); Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 192 (1889); Kirby, in
Hubner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 52 (1901).
Potamis. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 72 (spec : P. superba anaxarete = darius) (1806-16).
Brassolis. Hiibner, Verz. Schmett. p. 50 (part.) (spec. wie vor) (1816); Westwood, in Doubleday,
Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 350 (part.) (spec : B. macrosiris) (1851);
Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 64 (part.) (spec : B. macrosiris, strix)
(1865); Kirby, Cat. diurn, Lep. p. 125 (part. wie vor) (1871).
Morpho. Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 452 (part.) (spec : M. anaxarete = darius)
(1819); Kollar, in Denkschr. Akad. Wiss. Wien, Vol. 1, p. 358 (Sep. p. 8) (part.), (spec :
M. anaxarele = stygianus) (1840).
Pavonia. Godart, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, Suppl. p. 807 (1819); Doubleday, List Ins. Brit. Mus.
p- 117 (part.) (spec : P. darius) (1544).
Megastes. Boisduval, Lép. Guatém. p. 53 (part.) (Dynastor u. Brassolis\ (1870).
Allgemeine Charaktere. — Kopf in massiger Grésse, Augen oval gewélbt, nackt. Stirn kurz
und dicht behaart. Palpen fest an dem Kopf anliegend, diesen nicht tiberragend, dicht beschuppt, kurz
behaart, die Behaarung an der Kopfseite einen kleinen Schopf bildend. Basalglied kurz, aufwarts
gebogen, Mittelglied etwa dreimal so lang, nach oben gerichtet. Endglied sehr kurz, stumpf. Antennen
&
diinn, distal spindelférmig verdickt, etwa von der Lange der Zelle des Vorderfliigels. Thorax robust,
(1) Brassolis haenschi maritima, — A forma typ. differt fascia alarum anticarum in cellula haud alba sed paulo pallidius tincta.
Binde des Vorderfliigels auf der Oberseite distal weniger gezackt wie bei der typischen Form und vorn nur wenig fahler rostfarben wie im
iibrigen Verlauf, ohne weisse Beimischung. Unterseits eine teilweise verschwommene submarginale Wellenlinie. Hinterfliigel oben wie bei Brassolis
haenschi typ.; auf der Unterseite die Ocellen ohne deutliche Umrandung, nur als fahle, braunliche, blinde Flecke erhalten. In der Zelle proximal zwei
rétliche Flecke. Sonst wie die typische Form. Typus in coll. Thieme, Berlin.
(2) Tafel58 u. Soder Gen. diurn, Lep. ist friuherals der Text p. 346-351 erschienen (cf.Scudder, in Proc. Sc. Amer. Acad.Vol. ro, p.g8 und 160, 1875)
Als geistiger Urheber ist der Verfasser des 2. Bandes der Genera Ins., Westwood, anzusehen, da Hewitson nur die Illustrationen geliefert hat und
Boisduval bei der Bearbeitung des Werkes iiberhaupt unbeteiligt war.
FAM. NYMPHALID/® 9
dicht anliegend behaart. Abdomen fast von der Linge des Hinterrandes der Fliigel, spitz, ohne seitliche
Reibewiilste. Vorderfliigel breit, fast rechtwinklig dreieckig, Vorderrand scharf gekriimmt; Apex
eckig gewinkelt; Aussenrand fast gerade; Analwinkel abgerundet rechtwinklig; Hinterrand gerade.
Costalis und Subcostalis deutlich aber schmal getrennt, Subcostalis 5astig; Subcostalis 1 und 2
entspringen dicht bei einander vor dem Zellende, erstere etwa am letzten Drittel der Linge zwischen der
Fliigelwurzel und der letzteren; Subcostalis 3 in betraéchtlicher Entfernung jenseits der Zelle, alle drei
in den Vorderrand laufend. Subcostalis 4 und 5 bilden eine miassig lange Gabel, erstere in den Apex,
letztere kurz hinter ihr in den Aussenrand miindend. Zelle ziemlich schmal, in der Mittellinie unter halber
Fliigellange. V DC deutlich, etwas kiirzer als die in gleich schrager Richtung oder etwas gekriimmt
verlaufende M DC. HDC quergestellt, rechtwinklig zu V M. M und S M nichst der Basis etwas blasig
aufgetrieben. S M mit H M etwa parallel laufend, ziemlich gerade gestreckt. M M etwas naher an H M
entspringend als an V M. H Mund M M missig divergierend. V M etwa parallel zu M M. Hinterfliigel
fast eirund, Vorderrand flach, Apex véllig abgerundet, Aussenrand leicht gewellt, Analwinkel schwach
abgesetzt, Hinterrand vorn stark gelappt, den Leib umschliessend. Pricostalzelle gut entwickelt, langer
als breit, rhomboidal. Costalis unweit des Vorderrandes, diesem folgend, in den runden Apex auslaufend.
Zelle massig breit, etwa von halber Lange des Fliigels. V D C gerade, schrag gestellt, M D C etwa in
gleiche: Richtung, doppelt so lang, etwas geschweift; H D C scharf rechtwinklig hierzu, quergestellt.
co ohne iussere Geschlechtscharaktere.
Schema des Fliigelgeaiders. — Taf. |, Fig. 2.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Arten dieser Gattung leben hauptsachlich
in den Tropen Siid-Americas. Das Verbreitungsgebiet dehnt sich siidlich bis Paraguay und Argen-
tinien, nérdlich durch Central-America bis Mexico aus.
“
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
1. Dynastor darius Fabricius.
a. Dynastor darius darius Fabricius.
Papilio darius, Fabricius, Syst. Ent p. 482, n° 173 (1775)
Dynastor darius, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 347, n® 2 (1851).
Dynastor darius, Herrich-Schiiffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 64 (1869).
Dynastor darius, Butler. Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 40 (1869).
Dynastor dar.us, Burmeister, in Rev. Zool. (3), Vol. 1, p. 44, t. 6, f. 3 (biol.) (1873).
Dynastor dariux, Muller, in Zool. Jahrb. Vol. 1. p. 595 (biol.) (1886).
Dynastor darius, Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 214, t. 72 (1887).
Papilio anaxarete, Cramer, Pap. Exot. Vol 1, p. 148, t. 95,f. A, B & (1779); Stoll, eodem, Vol. 4, p. 167, t. 374,
f. A, B & (fig. typ.) (1782).
Papilio anaxarethus, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 6, p. 65, t. 131, f. 3-4 (1793).
Dynastor anaxarete, Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Peétersb. Lep. Vol. 1, p. 38, n° 651.
Brasilien bis Argentinien.
9.. forma ictericus Stichel (1).
Dynastor darius ictericus, Stichel, in Ins. Bérse. Vol. 21, p. 21, n° 17 (1904).
). Dynastor darius stygianus Butler. — Taf. 3, Fig. 2.
Dynastor stygianus, Butler, in Cist. Ent. Vol.1, p. 73 (1872).
Dynastor styzianus, Butler. Lep. Ex. p. 125, t. 47, f. 1 fig. typ. 2.) (1873).
Megastes darius, Boisduval, Lép. Guatém. p. 53 (1870).
Dynastor darius, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 123 (1881).
Morpho anaxarete, Kollar, in Denkschr. Akad. Wiss. Wien, p. 358 (Sep. p. 8), n° 18 (1850).
Central-America, Columbien.
(x) Minor specie typica, alarum anticarum semifascia ultracellulari maculisque non albidis, sed flavis; alarum posticarum fascia antfractuosa
asciaque angusta marginali ad costam flavis, reliquis partibus lutescentibus. Typ. in Coll. Mus. Tring. (Rio de Janeiro).
10 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
2. Dynastor macrosiris Westwood (Boisduval M. S.).
a. Dynastor macrosiris macrosiris Westwood.
Brassolis macrosivis, WWestwood (u. Hewitson) (Boisduval M. S.), in Doubleday, Westwood u. Ilewitson, Gen,
diurn. Lep. t. 59, f. 3 (fig. typ.) (1849) (1).
Byassolis macrosirvis, Westwood, eodem, Vol. 2, p. 351 (1851).
Cayenne.
b. Dynastor macrosiris strix Bates.
Brassolis stvix, Bates, in Ent. Mag. Walker, Vol. 1, p. 164, n° 66 (1864).
Dynastor strix, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 123, t. 12, f. 3-4 (1881).
Dynastor hannibal, Ch. Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 6, p. 28 (1881).
Columbien, Guatemala, Mexico.
3. Dynastor napoleon Westwood (Boisduval M. S.)
Dynastor napoleon, Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. t. 58, f. 2
(fig. typ.) (1849).
Dynastor napoleon, Burmeister, in Rev. Mag. Zool. (3), Vol. 1, p. 44 (1873).
Dynastor napoleon, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 214, t. 73 (1887).
Megastes napoleo, Boisduval M. S.
Dynastor napoleo, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen.diurn. Lep. Vol. 2, p. 347, n° x1 (1851)(1).
Stid-Brasilien.
3. GENUS DASYOPHTHALMA, WesTwoopb
Dasyophthalma. Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 343
(1851); Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 168 (1858) ; Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb.
Vol. 18, p. 99 (Sep. p. 55) (1864); Herrich-Schaffer, eodem, Vol. 19, p. 65 (1865); Kirby, Cat.
diurn. Lep. p. 129 (1871); Scudder, Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10. p. 155, n°330 (1875); Schatz,
(Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 194 (1889); Reuter, in Acta Soc. Sc. Fenn. Vol. 22,
p- 113 (1896); Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 53 (1901).
Caligo. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 68, f. 1, 2 (spec: C. creusa) (1816-24); Doubleday, List
Ins. Brit. Mus. p. 117 (part.) (1844).
Morpho, Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 435 (part.) (1819).
Pavonia. Godart, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, Suppl. p. 807 (1819); Lucas, Hist. Nat. Lép. Exot. p. 141
(Genre Pavonie, spec : P. lycaon Boisduval fiir vusina God.) (1835); Blanchard, in Hist. Nat. Ins.
Vol. 3, p. 454 (part.) (1841).
Allgemeine Charaktere. — Kopf ziemlich klein, Augen rund gewélbt, stark behaart. Palpen
dicht beschuppt und behaart, namentlich an der ventralen Seite mit straffen langen Haaren. Basalglied
kurz, stark gekriimmt, Mittelglied etwa dreimal so lang, ziemlich gerade, aufwarts gerichtet, Endglied
von der Linge des Basalgliedes, distal etwas verjiingt, den Kopf wenig tiberragend. Antennen diinn,
fast gar nicht verdickt, unter halber Lange des Fliigelvorderrandes. Vorderfliigel breit, nahezu elliptisch
oder dreieckig. Vorderrand flach gebogen, Apex abgerundet wenngleich noch etwas markiert, Anal-
winkel abgerundet rechteckig oder in einem flachen Kreisbogen abgeschnitten. Aussenrand wellig,
leicht konvex, Hinterrand nahe der Fliigelbasis ein wenig gelappt. Subcostalis fiinfastig. Subcostalis
I und 2 entspringen in massigem Abstande unter sich vor dem Ende der Zelle und laufen in den Vorder-
rand, Subcostalis 3 etwa auf der Mitte zwischen Zellende und Apex, in letzteren miindend. Subcostalis
4 und 5 als kurze Gabel hinter dem Apex in den Aussenrand auslaufend. V D C und M D C bilden eine in
schrager Richtung laufende, sanft gekriimmte Linie, letztere indes 3mal so lang als erstere, H D C wie-
derum kiirzer, steiler schrag gestellt, etwa in rechtem Winkel zur Mediana. Die breite Zelle ist hierdurch
distal schrag yon vorn nach hinten abgeschnitten. Submediana entsprechend dem Hinterrand stark
geschweift, die drei Median&ste annahernd parallel. Hinterfliigel fast eirund, Costa nichst der Basis
(x) Siehe Anmerkung auf Seite 8.
PAM. NYMPHALIDA: Il
etwas gelappt, sonst ziemlich gerade, Apex rundlich, Aussenrand gewellt, Analwinkel flach abgerundet,
Hinterrand gelappt, in der Ruhe den Leib umschliessend. Costalis nahe dem Vorderrand, diesem
folgend und in denselben naichst dem Apex auslaufend. Praecostalis kurz, fast gerade nach vorn gerichtet,
Praecostalzelle gross, breiter als lang, rhombisch. Zelle etwas tiber halber Fligellaénge, massig breit.
Gi mit einem kleinen ovalen Duftschuppenfleck auf der Subcostalis an der Abzweigung der V D C, der
in der Regel teilweise von einem hinter ihm stehenden, breiten, schief nach vorn gerichteten Haarbiischel
verdeckt wird. Abdomen robust, aber nur midssig gross, of ohne seitliche Reibewiilste.
Schema des Fliigelgeiiders. — Taf. |, Fig. 3.
Geographische Verbreitung der Arten,. — Das Fluggebiet der wenigen Vertreter dieser
Gattung ist auf Brasilien, namentlich den stidlichen Teil, beschrankt.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
1. Dasyophthalma rusina Godart.
a, Dasyophthalma rusina rusina Godart.
Morpho (Pavonia) rusina, Godart (Latreille u.),in Enc, Meth. Zool. Vol. 9, p. 451, n° 33, u. Suppl. p. 807, (1819).
Pavonia rusina, Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. t. 56, f. 1
fig. typ.) (1849).
yophthalma rusina, Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Pétersb. Lép. Vol. 1, p. 38, no 644 (1855).
Dasyop na rusina, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol-. 1, p. 217, t. 76 (1887).
Pavonialycaon, Lucas, Hist. nat. Lep. Exot. p. 141, t. 78, f. 1 (1835).
»phthalma delaniva, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3, t. Dasyophthalma und Thauwmantis, £. 1 (@) (1862).
asyophthalma delanira, Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 65 (1865).
Sud-Brasilien.
b. Dasyophthalma rusina principesa Stichel (Fruhstorfer, M. S.).
Dasyophthalma rusina principesa, Stichel in Ins. BGrse, Vol. 21, p. 21, n° 18 (1904) (z).
Siid-Brasilien : Espirito-Santo.
2. Dasyophthalma creusa Hiibner.
a. Dasyophthalma creusa creusa Hiibner.
Caligo creusa, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 68, f. 1, 2 3; t. 69, f. 3, 4 @ (fig. typ.) (1816-24)
Dasyophthalma creusa, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 344, n° 2 (1851).
Dasyophthalma creusa, Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Petersb. Lep. Vol. 1, p. 38, no 645 (1855).
Dasyophthalma creusa, Staudinger (Schatz u.), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 218, t. 76 (1887).
Morpho (Pavonia) anaxandra, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool.Vol. 9, p. 451 u.eodem, Suppl.
p- 807 (1819).
Pavonia anaxandra, Blanchard, in Cuvier, Régne An. Ins. Vol. 2, t. 141, f. 1 (1836); idem, in Hist. nat. Ins.
Vol. 3, p. 454, t 17, f. 1 (1841).
Papilio sophorae, Donovan, Nat. Rep. Vol. 3, t. 87-88, 2 (1825).
Siid-Brasilien : Santa-Catharina.
5, Dasyopthalma creusa baronesa Stichel (Fruhstorfer M. S.) (
Dasyopthalma creusa baronesa, Stichel, in Ins. Boérse, Vol. 21, p.
2).
21, n° 19.
Siid-Brasilien : Espirito-Santo, Rio de Janeiro.
3. Dasyophthalma vertebralis Butler. — Taf. 3, Fig. 3.
Dasyophthalma vertebralis, Butler, Cist. Ent. Vol. 1, p. 2, n° 1 (1869).
Dasysphtholma vertebralis, Butler, Lep. Exot. p. 125, t. 47, f. 2 (fig. typ. 3) (1873).
Ost- und Siid-Brasilien.
(1) Dasyophthalma rusina principesa. A specie typica differt in mari : fascia alarum anticarum intus convexe dilatata, ascia alarum
posticarum in extrema parte obsoleta vel etiam abbreviata; in femina : alarum anticarum maculis ultracellularibus obliquis perquam indistinctis.
Von der typischen Form dadurch unterschieden, dass die gelbliche Querbinde des Vorderfliigels beim G proximal bauchig erweitert ist.
Beim © erscheinen die jenseits der Zelle liegenden, schrag bindenartig angereihten Flecke meist undeutlich und verwaschen.
2) Dasyophthalina creusa baronesa. Differt a D. creusa typ. alarum posticarum fuscia transversa albida satis distincta et elongata, fascia
obliqua alarum anticarum versus apicem magis coalita.
Eine anscheinend in der Provinz Espirito-Santo constant auftretende geographische Rasse der Art mit deutlicherer und vollkommen
entwickelter weisslicher Querbinde des Hinterfiiigels und im vorderen Teil besser geschlossener Transversalbinde des Vorderfliigels, als dies bei
der typ. D. creusa der Fall ist.
12 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
4. GENUS PENETES, WestTwoop
Penetes. Westwood (u. Hewitson) (Boisduval M. S.), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen.
diurn. Lep. t. 58, f. r (1849) (1); Westwood, eodem, Vol. 2, p. 347 (1851); Chenu u. Lucas,
Encycl. Papill. p. 171 (1858); Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 18, p. 98 [Sep.
p- 56 (54)] (1864) u. eodem, Vol. 19, p. 64 (1865) ; Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 127 (1871); Scudder,
in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 243, n° 825 (1875); Schatz (Staudinger u.), Exot. Smett.
Vol. 2, p. 192 (1889).
Allgemeine Charaktere. — Kopf gewoéhnlich, Augen rundlich gew6lbt. Palpen dicht behaart,
und beschuppt, ventral mit sparlicheren, langeren, abstehenden Haaren bewachsen, dorsal ohne sonder-
lich abstehenden Schopf. Basalglied kurz, Mittelglied etwa dreimal so lang, aufwarts gekriimmt,
Endglied viel kiirzer, deutlich abgesetzt, diinn und spitz, glatt beschuppt, etwas iiber den Kopf hervor-
ragend. Antennen diinn, distal etwas starker, unter halber Linge des Vorderfliigels. Thorax robust,
lang schlicht behaart. Abdomen kiirzer als der Hinterfltigel, beim of spitzig, mit seitlichen Reibe-
wiilsten. Vorderfliigel rechtwinklig dreieckig, Costa gekriimmt, Apex ziemlich spitz, infolge des tief
konkaven Ausschnittes am Aussenrand stumpf-sichelartig vorgezogen. Analwinkel abgerundet rechteckig,
Hinterrand gerade. Subcostalis fiinfastig, Subcostalis 1 zweigt sich etwa auf 3/4 der Lange von der
Basis bis zum Zellende ab, Subcostalis 2 entspringt kurz vor letzterem, Subcostalis 3 in betrachtlicher
Entfernung hinter ihm; alle drei laufen in den Vorderrand. Subcostalis 4 und 5 bilden eine massig lange
Gabel, ersterer Ast in den Apex, letzterer kurz hinter ihm in den Aussenrand einmiindend. Zelle breit,
unter halber Fliigellange, distal ziemlich steil abgeschnitten, V DC etwas ktirzer und schrager liegend
als die fast gleich langen und in etwa gleicher Richtung steil gestellten beiden anderen Discocellularen.
SM parallel zum Hinterrand, H M und M M gestreckt und gerade, V M etwas nach vorn divergierend.
Hinterfliigel etwa eirund. Apex véllig abgerundet, Analwinkel an S M nur wenig markiert, Aussenrand
gewellt, Hinterrand gelappt, den Leib umschliessend. Praecostalzelle breiter als lang, rhombisch.
Costalis nahe dem Vorderrand, in den Apex auslaufend. Zelle lang und schmal, durch die spitzwinklig
zu einander gestellten H D C und Mediana keilférmig abgeschlossen. G mit kleinem Haarpinsel an der
Innenseite der Submediana, etwa in der Mitte derselben. Unterseite einténig hellbraun, dunkler
gewolkt mit schwarz bestiéubten Adern, ohne Augenzeichnung oder Strichelung.
Schema des Fliigelgeiders. — Taf. |, Fig. 4.
Geographische Verbreitung der Art. — Die eine bekannte Art dieser eigentiimlichen
Gattung bewohnt Siid-Brasilien.
VERZEICHNIS DER ART
1. Penetes pamphanis Westwood (Boisduval M. S.)
Penetes pamphanis, Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep, t. 58,
f. 1 (fig. typ.) (1849).
Penetes pamphanis, Westwood, eodem, Vol. 2, p. 348 (1851).
Penetes pamphanis, Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 171, f. 282 (1858).
Penetes pamphanis, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 64 (1865).
Penetes pamphanis, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 127 (1871).
Penetes pamphanis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 214 (1887).
Penetes pamphanis, von Bonninghausen in Verh. Nat. Ver. Hamburg, Vol. 9, p. 40 (1896).
Brasilien ; Para bis Minas-Geraes.
(x) Siehe Anmerkung auf p. 8.
FAM. NYMPHALID/® 13
5. GEnus NAROPE, Westwoop
Narope. Westwood (u. Hewitson) (Boisduval M. S.), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen.
diurn. Lep. t. 50, f. 4. (1849) (t); Westwood, eodem, Vol. 2, p 349 (1851); Chenu u. Lucas,
Encycl. Papill. p. 172 (1858); Herrich-Schiaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 18, p. 99 (Sep.
p- 55) (1864); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 129 (1871); Scudder, in Proc. Amer. Acad. Se.
Vol. 10, p. 224, n° 727 (1875); Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1,
p. 139 (1881); Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 194 (1889).
Allgemeine Charaktere. — Kopf gewéhnlich, Augen rundlich gewélbt, nackt. Stirn schopf-
artig behaart. Palpen seitlich flach, dicht und schlicht anliegend beschuppt und behaart, die Behaarung
an der Basis struppiger und zottig. Basalglied kurz, stark gekriimmt, Mittelglied viel langer, proximal
aufwarts gebogen, dann gerade gestreckt. Endglied deutlich-abgesetzt, kiirzer, platt und missig spitz,
den Kopf iiberragend. Antennen diinn, distal schwach spindelférmig verdickt, unter halber Lange des
Vorderfliigels. Thorax robust. lang und schlicht behaart. Abdomen kurz, spitz, beim & ohne seitliche
Reibewiilste. Vorderfliigel im allgemeinen Umriss dreieckig, Vorderrand ziemlich stark gekriimmt,
-\pex spitz und scharf, meist etwas vorgezogen. Aussenrand beim ¢ in der Regel gerade oder leicht
konkav, seltener flach convex wie beim Q. Analwinkel stumpf. Hinterrand beim o mehr oder weniger
geschweift, beim Q fast gerade. Costalis dem Vorderrand folgend,im letzten Drittel desselben endigend.
Subcostalis fiinfastig, Subcostalis 1 in der Regel verkiimmert, diese sowie Subcostalis 2 u. 3 in verschie-
dener Anordnung zu einander, mitunter sogar innerhalb ein und derselben Art verschieden. Es kénnen
folgende Combinationen unterschieden werden :
a. Subcostalis 1 ganz rudimentir, nur als schwach chitinisierter, schrag nach vorn gerichteter
dinner Zapfen am letzten Drittel der Hauptader (die Ausdehnung letzterer von Basis bis Zellende
gedacht). Subcostalis 2 in massiger Entfernung nach ersterer, kurz vor der vorderen Zellecke entsprin-
gend, geschweift, mit der Costalis teilweise verwachsen, gegen das Ende derselben aber gabelférmig
abgezweigt und frei in den Vorderrand auslaufend. Subcostalis 3 unmittelbar von der Zellecke aus-
gehend und in ganzer Lange frei in den Apex. Subcostalis 4 und 5 in Gestalt einer langen Gabel vorn
in den Aussenrand miindend (Vereinzelter Fall nach 1 Q N. cyllastros, e coll. Ch. Oberthiir).
5. Subcostalis r wie vorher, aber verlangert, als diinnes Aderfragment schrag in die Costalis ein-
laufend und mit dieser vollstandig verwachsen. Subcostalis 2 wie bei a mit Costalis teilweise verwachsen
oder dieser statt dessen wenigstens eng anliegend, vorn frei in den Aussenrand. Subcostalis 3-5 wie bei a.
(Haufigster und gewohnlicher Fall, siche Taf. |, Fig. 5).
c. Subcostalis 1 und 2 wie bei b. Subcostalis 3 mit Subcostalis 2 ebenfalls teilweise verwachsen oder
eng an dieselbe anliegend. Subcostalis 4 und 5 wie gewéhnlich. In
diesem Falle ist Costalis wie auch Subcostalis 2 und 3 an den verwach-
senen Stellen ziemlich kraftig und die Aderbildung macht téuschend
den Eindruck, als wenn die Costalis in ununterbrochenem Laufe sich bis
in den Apex zieht, hinter der Mitte der Lange 2 kurze, schrage Auslaufer
nach vorn bildet (Spitze der Costalis und Subcostalis 2) und hinten durch
3 diinne Aeste (Subcostalis 1, 2, 3) mit der Zellwand verbunden is’.
(Einzelner Fall nach einem N. anartes e coll. Ch. Oberthiir, siehe Figur.)
d. Subcostalis 1 zuerst wie bei b, aber gegen das Ende der Costalis
wiederum frei werdend und mit der letzteren am Vorderrande eine kurze
Gabel bildend in derselben Weise wie dies bei Subcostalis 2 und Costalis im Falle zu } charakteristisch ist.
Subcostalis 2 dagegen in ganzer Lange frei in den Vorderrand. Subcostalis 3 dicht neben letzterer aus
(1) Siehe Anmerkung auf p. 8.
14 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
der Zellecke in den Apex, Subcostalis 4 und 5 wie gewéhnlich in den Aussenrand, aber die Gabel kiirzer.
(Nach 1 of N. albopunctum e coll. Ch. Oberthiir. Vielleicht charakteristisch fiir die Art, die auch in
den tertiaren Sexualkennzeichen von den iibrigen Narope-Arten auffallig abweicht).
Zelle breit und kurz, distal flach von vorn nach hinten abgeschragt, die 3 I) C etwa gleich lang
und ohne wesentliche Winkelbildung zu einander. H D C steht fast senkrecht zur Mediana. M M niher an
H Mals an V M, namentlich beim o, und mit der erstgenannten etwas divergierend. S M beim Q fast
gerade, beim G mehr oder weniger geschweift, nur in einem Falle (N. albopunctum) fast unmerklich
gekriimmt. Bei den o% der meisten bekannten Arten in einer scharfen Biegung dieser Ader auf der
Unterseite ein kleiner ovaler, mehlartig bestaiubter Duftfleck, auf dem ein am Hinterrand originierender,
nach vorn gerichteter Haarbiischel ruht; dieser Fleck markiert sich oben als kleine elliptische Beule in
der Membran und fehlt nur bei eben genannter Art. Hinterfliigel elliptisch bis dreieckig mit konvex
gekriimmten Seiten, beim Gf an der M M oder H M, beim Q an letzterer mehr oder weniger deutlich
geeckt, selten ganz rund. Analwinkel meist deutlich abgesetzt, Hinterrand gelappt. Costalis distal stark
gekriimmt, dem Vorderrand allmahlich genahert und in den mehr oder weniger abgerundeten Apex
miindend. Zelle schmal, itber halber Linge des Fliigels, V D C und M DC annahernd gleich lang und in
einer fast gleichmissig schragen Richtung ohne wesentliche Winkelung zu einander verlaufend. H DC
steiler gestellt, mit M einen spitzen Winkel bildend, wodurch die Zelle distal spitz keilf6rmig begrenzt
ist. Aus dem Scheitel dieses Winkels entspringt der vordere Medianast. Praecostalzelle miachtig ent-
wickelt, breiter als lang, rhombisch. Praecostalis einfach, fast gerade. G% meist mit einer blanken
Reibeflaéche distal yon der Praecostalzelle, auf welcher ein ovaler, mehlartig bestéiubter heller Duftfleck
hegt oder in einem Falle (N. albopunctum) ohne diese Auszeichnung, dagegen mit einem kleinen Haar-
pinsel in der Zelle dicht an der Mediana, welcher nach hinten gerichtet und teilweise in einer
taschenartigen Falte nichst dem hinteren Medianast verborgen ist.
Schema des Fliigelgedders (hiufigster Fall). -— Taf. |, Fig. 5.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Vertreter dieser etwas abgesondert in der
Subfamilie stehenden und durch die Unbestiandigkeit des Aderverlaufes von Costalis und Subcostalis
des Vorderfliigels merkwiirdigen Gattung sind itber Central- und Siid-America, ausgenommen die
stidlichsten Gegenden dieses Weltteiles, verbreitet. Sie sind sicher bekannt aus Panama bis Bolivien
einerseits, Venezuela und Guayana bis Paraguay andererseits. Die Herkunft der einen, von Westwood
benannten Art (NV. cyllabavus), Mexico, erscheint fraglich.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Sectio |. PLLOPOECILI
Hinterfliigel des o oberseits nachst der Praecostalzelle mit einer blanken Reibeflache,
auf der ein filziger Duftfleck lagert.
Cohors |. CYLLASTROFORMES
Hinterfliigel am Aussenvand mehy oder weniger deutlich geeckt.
1. Narope cyllastros Westwood.
a. Narope cyllastros cyllastros Westwood.
Navope cyllastros, Westwood (u. Hewitson) (Boisduval M. S.), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen.
diurn. Lep. t. 50, f. 4 (fig. typ. S) (1849).
Narope cyllastros, Westwood, eodem, Vol. 2, p. 349, n° 1 (185
Narvofe cyllastros, Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 172, f.
FAM. NYMPHALIDZ® 15
Naropfe cyllastros, Miller, in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 601 (Biol.) (1886).
Narope eyllasivos, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 218, t. 76 (1887).
Narope cyllastrus, v. BOnninghausen, in Verh Nat, Ver. item Vol. 9, Pp. 39 (1896).
Narope cyllene, C. u. R. Felder, in Wien. Ent. Mon. Vol. sh ae. 270 © (1859).
Narope stygius, Staudinger, Exot. Schmett, Vol. 1, p. 218 (2) (1887)
Guayana, Venezuela, Brasilien.
b. Narope cyllastros testacea Godman u. Salvin.
Narope testacea, Godman u. Salvin, in Ann. Nat. Hist. ser. 5, Vol. 2, p. 259 (1878).
Narope testacea, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 139, t. 15, f. 4-6 (fig. typ. 6, 2) (1881).
Central-America.
Narope cyllarus \Westwood. — Taf. 4, Fig.
Narofe cyllarus, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 349, no 3
(Fussnote) (1851).
Narofe cyllarus, Staudinger ‘a Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 218 (1887).
Narope cyllarus, v. BOnninghausen, in Verh. Nat. Ver. Hamburg, Vol. 9, p. 39 (1896).
Siid-Brasilien
Uo
Narope sarastro Staudinger.
Narofe sarastro, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett Vol. 1, p. 218, t. 76 (S fig. typ.) (1887).
Narofe sarastro, Stichel, in Ins. Bérse, Vol. 21, p. 21, n° 20 (2) (1904).
Columbien, Ecuador.
4. Narope anartes [/ewitson.
Narope anartes. Hewitson, Bol. Butterflies. p. 9 (1874).
Narope anartes, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 218 (1887).
Narope syllabus, Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 218 (1887).
Narope marmorata, Schaus, in Proc. U. S. Mus. Vol. 24, p. 390 (1902).
Bolivien, Peru.
Cohors Il. NESOPIFORMES
Aussenrvand des Hinterfliigels beim of vollkommen abgerundet.
Narope nesope Hevwitson.
Narope nesope, Hewitson, Equat. Lep. p. 34, n° 56 (1869).
Ecuador,
6. Narope cyllabarus Westwood.
Narope cyllabarus, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn, Lep. Vol. 2, p. 349, n° 2
Fussnote) (1851).
Narope cyllabarus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 218 (1887).
Guayana (Cayenne), Amazonas, Columbien, Bolivien, Mexico (? nach Weswood).
ees. panniculus Stichel. — Taf. 4, Fig. 2.
Narofe panniculus, Stichel, in Ins. Borse, Vol. 21, p. 6, n° 15 (1904) (I).
Paraguay, Sud-Brasilien, Bolivien.
1) Naroge fanniculus, Alis integerrimis, anticis subtriangularibus, posticis subrotundatis, haud angulatis, omnibus supra fumoso-brunneis,
bus. sed anticis cam pluga indistincta obscura holosericea in area media posteriore; posticis cum plaga minore subcostali nuda maculam farinaceam
includente. Subtus omnibus fumosis, obscurius indistincte variegatis et notatis. Long. al. ant. 25 28 mm.
Vorderfliigel etwa dreieckig, Costa stark gekriimmt, Apex fast rechtwinklig. Hinterfligel nahezu elliptisch, Analwinkel vollig abgerundet.”
Oberseite einfarbig rauchbraun, in der hinteren Medianzone ein grosser, dunkler gefarbter, sammetartiger, rundlicher Fleck, der von der Zelle bis zum
Hinterrand reicht. Hinterfliigel ausser einem kleinen gelblichen Filzfleck auf blanker Reibefliiche vor der Subcostalis ohne Zeichnung. Unterseite etwas
heller, unregelmissig und schwach braunlich chagriniert und gestrichelt, Vorderfliigel mit dunklerem Basalteil und zwei sehr undeutlichen, schattenhaften
transversalen Halbbinden. An der Costa im letzten Drittel ein weissliches Fleckchen, zwischen den Radialen ein ungewisser schwirzlicher Punkt. Haar-
pinsel hinter der Mitte der 5 M rostgelb. Hinterfliigel mit ungewisser medianer Schattierung, vorn, hinter der Costalis ein kleiner weisslicher Punkt.
Exemplare aus Bolivien, Rio Yuntas, 1000 m. (in coll, Staudinger) grosser und intensiver in der Farbe. Type in coll. Stichel e Paraguay.
concolori
16 : LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Sectio Il. PERACURII
Hinterfliigel des co oben ohne Duftfleck, dagegen mit kleinem, teilweise in einer
taschenartigen Falte verborgenem, in der Zelle entspringendem Haarpinsel.
8. Narope albopunctum Stichel.
Narope albopunctum, Stichel, in Ins. Bérse, Vol. 21, p. 6, n° 14 (1904) (1).
Peru.
6. GENUS OPSIPHANES, WeEstTwoop
Opsiphanes. Westwood (u. Hewitson) (Doubleday M. S.) in Doubleday, Westwood u. Hewitson,
Gen. diurn. Lep. T. 57, f. 1 (Spec. typ. O. Botsduvalit) (1849); Westwood, eodem, Vol. 2, p. 344
(part.) (1851); Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Pétersb. Lép. Vol. 2. p. 38 (part.) (1857); Chenu
u. Lucas, Encycl. Papill. p.170 (part.) (1858); Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 18,
p.98 (Sep. p. 56, r. 54) (1864); Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 40 (part.) (1869); Kirby, Cat.
diurn. Lep. p. 125 (part.) (1871); Scudder, in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 40 (1875);
F. Miiller, in Ent. Zeit. Stett. vol. 39, p. 296 (1878); Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer.
Rhop. Vol. 1, p. 125 (part.) (1881); Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 75 (part.) (1882);
Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett. vol. 2, p. 192 (part.) (1889); Reuter, in Acta Soc. Sc.
Fenn. Vol. 22, p. 112 (part.) (1896); Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg.
p. 50 (part.) (1901); Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 503 (1gor).
Potamis. Hiibner (part.), Exot. Schmett. Vol. 1. t. 74, f. 1-2 (spec. : P. superba cassiae, auch t. 75, f. 3-4
P. superba cassiae, Q und t. 76, f. 1-2, P. superba invivae) (1806-16). af
Brassolis. Fabricius, Syst. Gloss. M. S., Illiger in Mag. Ins. Vol. 6, p. 282 (part.) (spec. : B. cassiae)
(1807); Hiibner, Verz. Schmett. p. 50 (part.) (spec. : B. cassiaz, B. quiteria, B. invirae) (1816);
Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 66, f. 3-4 (spec. : B. invivae Q) (1816-24).
Caligo. Hiibner (part.), Exot. Schmett. Vol. 2, t. 70, f. 1-2 (spec. : C. batea) (1816-24); Boisduval, Lép.
Guatém. p. 54 (part.) (1870).
Morpho. Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. g, p. 435 (part.) (1819).
Pavonia. Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, Suppl. p. 807 (part.) (1819); Blanchard in Hist.
Nat. Ins. Vol. 3, p. 454 (part.) (1840); Doubleday, List Ins. Brit. Mus. p. 117 (part.) (2844);
Burmeister in Rev. Zool. (3) Vol. 1. p. 31 (Caligo et Opriphanes) (1873).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, Augen gross, rundlich gewélbt. Stirn kurz behaart.
Palpen dicht und glatt beschuppt und behaart. Basalglied kurz, schwach aufwarts gekriimmt, Mittelglied
etwa dreimal so lang, ziemlich gerade gestreckt, dorsal ohne eigentlichen Schopf,am distalen Teil aber
(x) Naroge albopunctum. Alis integerrimis, anticis subtriangularibus, costa et margine exteriore convexis, apice acuto, posticis subrotundatis,
angulo anali subangulato. Supra omnino nigrescens, concolor, alis anticis puncto dilute albo subapicali. Subtus alis omnibus ochraceis, obscuro variegatis,
notatis, anticis in apice albido conspersis, fascia transversa obliqua pertinente usque ad marginem posteriorem, punctis subapicalibus binis, uno albo, altero
posteriore atro; posticis in costa area basalialbostriatis, fascia transversa discali fusca, introrsum albo-fimbriata, cellulam extus tanzente, punctorum atrorum
serie ultracellulari, quorum anteriore albopupillato.
Grundfarbe dunkel rauchbraun, fast schwarz. Gestalt ahnlich Waroze cyllastros OQ, Apex etwas stumpfer, Aussenrand hinter demselben nicht
eingebuchtet, sondern flach konvex. Hinterfliigel beim G an der M M schwach gewinkelt. Oberseite einfarbig, Vorderfligel vor der vorderen Radialis
nahe dem Aussenrand mit einem rein weissen Fleckchen, auf dem Hinterfliigel der diskale Schrigstreif der Unterseite durchscheinend, auch mit sehr
unsicherem dunkleren Saumstreif. Unterseite heller, weisslich und braun gewoélkt, gestrichelt und marmoriert. Vorderfliigel mit zwei ungewissen
transversalen dunkleren Halbbinden,Apex und Aussenrandzone reichlich weiss betupft.Zwischen Subcostalis 3 und 4 ein isolierter weisser Punkt,ein weisser
kleiner Fleck hinter Subcostalis 5 wie oben, hinter ihm, zwischen den Radialen, ein schwarzer Punkt. Vom Apex schrag gegen die Mitte des Hinterrandes
zieht ein dunk -Ibrauner, beiderseits heller angelegter Streif. Hinterfliigel im Basal- und Aussenfelde reichlich weiss betupft, mit einem dunklen,
proximal weisslich besiumten, schrigen Querstreif, welcher das Zellende berahrt. Distal von diesem eine geschwungene Reihe schwarzer Punkte in
lichterer Umrandung, deren vorderster weiss gekernt ist. Saum schmal braun. Vorderfliigel-Linge 28 mm. Typus (Gi non Q) in coll. Staudinger, 1 G in
coll. Ch. Oberthiir. Peru, Marcapata.
6a
FAM. NYMPHALID 17
mit stirker abstehenden Haaren bekleidet. Endglied glatt, spitz, nur wenig iiber den Kopf hervorragend.
Antennen schlank aber kraftig, distal mit deutlicher Verdickung. Thorax robust, stark schlicht behaart.
Fligelbau kraftig. Vorderfliigel annahernd dreieckig mit missig gekriimmtem Vorderrand und ziemlich
spitzem, seltener rundlichem Apex. Aussenrand selten gerade, meist mehr oder weniger konkav ausge-
schnitten, bei den Gg’ mehr als den QO Q. Analwinkel rechteckig, etwas abgerundet, Hinterrand fast
gerade. Subcostalis nachst der Fliigelwurzel in kurzem Bogen von der Costalis abgewendet, sodann nach
vorn gekriimmt und auf eine kurze Strecke an der letzteren eng anliegend. Im iibrigen fiinfastig. Zwei
Aeste vor dem Zellende, der dritte in betrachtlicher Entfernung hinter demselben entspringend, alle drei
in den Vorderrand miindend, der vierte in den Apex auslaufend und mit Subcostalis 5 eine kurze Gabel
bildend. Der letzte Ast dicht hinter dem Apex in den Aussenrand. Zelle kurz, hinteres Ende das vordere
wesentlich iiberragend. Vordere Discocellularis kurz aber deutlich, schrag von der Subcostalis ohne
eigentliche Winkelung oder in sehr stumpfem Winkel abgebogen und von der mittleren in gleicher
Richtung fortgesetzt. Hintere Discocellularis etwas gekriimmt, steiler gestellt und in annahernd
rechtem Winkel in die Mediana einmiindend. Letztere nachst der Basis blasig aufgetrieben. Mittlere
und vordere Mediana unweit von einander entspringend, meist merklich gekrimmt und mehr oder
weniger reichlich divergierend. Hinterfliigel etwa elliptisch. Apex abgerundet, Analwinkel meist deutlich
markiert. Praecostalis iiberragt Costalis bedeutend, letztere dem Vorderrand in unmittelbarer Nahe
folgend. Praecostalzelle breiter als lang, Mittelzelle Jang und schmal, mittlere Discocellularis lang,
gebogen, hintere fast rechtwinklig zur Mediana und mit dieser die Zelle keilf6rmig abschliessend. & mit
kleinem Haarpinsel auf blanker Reibeflache an der Submediana und mit wenigen Ausnahmen
(Cohors IB) mit einem zweiten, langs der, meist verdickten hinteren Mediana in einer kleinen Falte
der Membran liegenden Haarpinsel, aus dem hinteren Teil der Zelle entspringend. Saum beider Fliigel
mehr oder weniger gewellt; derjenige des Hinterfliigels manchmal stark gezackt, letztere unterseits mit
2 Ocellen. Abdomen robust, beim of mit seitlicher Reibeflache und driisenartigen Wiilsten,
Schema der Fliigelgeiders. — Taf. I, Fig. 6.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Arten dieser Gattung leben hauptsachlich
im tropischen Siid-America, sie breiten sich nach Norden durch Central-America bis Mexico, siidlich
bis Paraguay und Argentinien aus.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Cohors |. BATEIFORMES
Oberseite ocker- bis bleichgelb mit mehr oder weniger breiter schwarzerBesdumung.
A. Hinterfliigel beim Gf mit 2 Haarpinseln, jeeiner inder Zelle und an der Submediana, letzterer auf blanker Reibefliche.
1. Opsiphanes batea Hiibner.
Caligo batea, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 70, f. 1 u. 2 (fig. typ.) (1816-24).
Opsiphanes batea, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 345 (1851)
Opsiphanes batea, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 212 (1887).
Opsiphanes batea, Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 51 (1901).
Morpho (Pavonia) saronia, Godart, in Enc. Méth, Zool. Vol. 9, p. 450, n° 31, u. Suppl. p. 807 (1810).
Opsiphanes saronia, Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Pétersb. Lép. p. 38, n° 647 (1857).
Siid-Brasilien.
Zep Opsiphanes didymaon Felder.
Opsiphanes didymaon, C. u. R. Felder, in Reise Novara Lep. Vol. 2 (2), p. 453, n° 748 (1863).
Opsiphanes didymaon, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 504, n° 3 (1901).
Siid-Basilien, Paraguay.
18 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
B. Hinterfliigel beim S ohne Haarpinsel in dey Zelle.
3. Opsiphanes catharinae Stichel.
Opsiphanes catharinae, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 505, n° 4 (1901).
Opsiphanes didymaon, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 212 (1887).
Siid-Brasilien.
4. Opsiphanes bassus Felder.
Opsiphanes bassus, C. u. R. Felder, in Reise Novara Lep. Vol. 2 (2), p. 453, n° 749 ( (1867).
Opsiphanes bassus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett, Vol. 1, p. 212 (1887).
a. forma Iluteipennis, Butler.
Opsiphanes luteipennis, Butler, in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 425 (1874).
Opsiphanes bassus ab. lutetpennis, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 504 (1901).
B. forma nov. oculata, Stichel.
Analocelle des Hinterfliigels oberseits voll braun gefarbt. 1 6, 2 Q typ. in Mus. Berol. no 2877, Brasil.
Sud-Brasilien.
Cohors Il. CASSIIFORMES
Oberseite ockergelb ohne schwarze Einfassung oder dunkelbraun mit gelbbrauner,
weisslicher oder weisser Binde oder Fleckenbinde auf dem Vorderfliigel.
A. Oberseite einfarlig gelbbraun.
5. Opsiphanes boisduvalii Westwood (Doubleday M. S.).
Opsiphanes boisduvalii, Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep
t. 57, f. 1 (fig. typ.) (1849).
Opsiphanes boisduvalii, Westwood, eodem, Vol. 2, p. 345, n° 3 (1851).
Opsiphanes boisduvalii, Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 170, f. 281 (1858).
Caligo boisduvalii, Boisduval, Léep. Guatém. p. 55, n° 2 (1870).
Opsiphanes boisduvalii, Godman u, Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 126 (1881).
Opsiphanes boisduvalii, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 214 (1887).
Central-America : Honduras-Mexico.
B. Oberseite mit voller, vorn nicht gegabelter Binde oder Fleckenbinde.
6. Opsiphanes cassize Linné.
a. Opsiphanes cassiae cassiae, Linné.
Papilio cassi@, Linné, Syst. Nat. (10), p. 471, n° 82 (1758).
Papilio cassie, Linné, Mus. Lud. Ulr. p. 265, u. Clerck, Icon. Ins. t. 34, f. 2 (fig. typ.) (1764).
Papilio cassi@, Cramer, Pap. Exot. Vol. 2, p. 13, t. 105, f. A und B (2) 1777).
Potamis superba cassie, Hubner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 74, f. 1 und 2 (G), t. 75, f. rund 2 (Q) (1806-16).
Brassolis cassie, Hiibner, Verz. Schmett. p. 50, n° 471 (part.) (1816).
Morpho (Pavonia) cassie, Godart (Latreille u.), in Enc. Méth. Zool. Vol. 9. p. 454, n° 42 (part.), und Suppl.
p. 807 (1819).
Opsiphanes cassie, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 346, n° 10 (1851).
Opsiphanes cassie, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 72 (1882).
Opsiphanes cassie, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 505 (1901).
Papilio glycerie, Fabricius, Mant. Ins. Vol. 2, p. 36, n° 379 (1787).
Opsiphanes glycerie, Butler, Cat. Fab. Lep. p. 41, n° 3 (1869).
Opsiphanes glycerie, Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 51 (1901).
Opsiphanes crameri, C. u. R. Felder, in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 123 (1862).
Opsiphanes crameri, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 126, n° 14 (1871).
Opsiphanes crameri, Méschler, in Verh. Ges. Wien, Vol. 26, p. 321 (1876)
Opsibhanes crameri, Berg, in An. Mus. Buenos-Aires, Vol. 6, p. 371 (1899).
Central- und Siid-Brasilien, Columbien.
FAM. NYMPHALIDZ 19
6. Opsiphanes cassiae cassiculus, Stichel, nov. subsp, (1).
Surinam, Guayana (?).
c. Opsiphanes cassiae castaneus, Stichel, nov. subsp. (2).
Panama, Columbien, Central-America.
d. Opsiphanes cassiae rubigatus, Stichel, nov. subsp. (3).
Ecuador.
7. Opsiphanes zelotes Hewitson.
Opsiphanes zelotes, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 5, t. Opsiphanes, f. 3 und 4 (fig. typ.) (1874).
Opsiphanes zelotes, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 511, n° 8 (190r).
Columbien.
8. Opsiphanes tamarindi Felder.
a. Opsiphanes tamarindi tamarindi Felder.
Opsiphanes tamarindi, C. uu. R. Felder, in Wien. Ent. Mon. Vol. 5. p. 111, n° 107 (1861).
Caligo tamarindi, Boisduval, Lép. Guatém., p. 54 (1870).
Ospsiphanes tamarind?, Gcdman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop.Vol. 1,p.128, t. 13, f. 5, 6 (fig. typ.) (1881).
Ofsiphanes tamarindi, Miller, in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 593 (biol.) (1886).
Mexico bis Columbien.
). Opsiphanes tamarindi corrosus Stichel.
Opsiphanes tamarindi corrosus, Stichel, in Ins. Borse, Vol. 21, p. 21, n° 21 (4).
a. forma spadix, Stichel, in Berlin. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 510 (1901).
Ecuador.
c. Opsiphanes tamarindi bogotanus Distant.
Ofsiphanes bogotanus, Distant, in Ent. Mag. Walker. Vol. 11, p. 203 (1875).
Opsiphanes bogotanus, Waterhouse, Aid t. 55 (fig. typ.) (188z).
Opsiphanes tamarindi bogotanus, Stichel,in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 510 (1901).
Opsiphanes tamarindi var. alba, Staudinger, M.S.
Columbien.
d. Opsiphanes tamarindi incolumis Stichel.
Opsiphanes tamarindi incolumis, Stichel, in Ins. Borse. Vol. 21, p. 21, n° 22 (1904) (5).
Peru.
(1) Opsiphanes cassiae cassicu/us. Minor specie typica. Alarum anticarum fascia transversali angustiore, in mari interdum interrupta.
Alis posticis concoloribus, in femina apice paulo maculatis.
Kleinere Lokalrasse mit verschméilerter Vorderfliigelbinde, die an den Medianadern zerschnitlen oder tief eingekerbt ist. Hinterfliigel
einfarbig, nur beim © mit ein bis zwei ganz obsoleten Apikalfleckchen. Die Vorderfligelbinde bei letzterem etwas breiter aber an den Medianisten
ebenfalls stark gekerbt. Vorderfligellinge ¢ 38-39, 2 43-46 mm. — Surinam, 2 G, 2 9, Typ. in coll. Stichel.
(2) Ofsiphanes cassiae castaneus. SG Alis anticis fascia transversali abbreviata, posticis concoloribus.
Intensiy gefarbte Unterart, bei der die Transversalbinde des Vorderfligels bis zum hinteren Medianast vollkommen, der letzte Zipfel aber nur
als obsoleter Wischfleck erhalten ist. Hinterfliigel einfarbig schwarzbraun. Unterseite besonders lebhaft und grell gezeichnet. Beide Ocellen des Hinter-
flagels, namentlich aber die vordere stark vergréssert.— Scheint sich nach Norden in Central-America und nach Siiden in Columbien, in weniger charak-
teristischer Gestalt auszudehnen und bildet dortUeberginge zur typischen Form mit verkiirzter, manchmal unterbrochenerVorderfliigelbinde aber einigen
Apikalfleckchen auf dem Hinterfliigel. Unterseite dann normal. — Vorderfliigellange 47-48 mm. — Typ. (G) in coll. Stichel. — Panama, Bugaba.
G)Opsiphanes cassiae rubigatus.—Alis anticis ut in forma typ.Alarum posticarum apice submaculato, srea anali plus minusve rubiginose inducta.
Vorderfligel etwas massiger,Apex etwas weniger spitz, sonst wie bei der typ. Form. Hinterfliigel mit etlichen Apikalfleckchen, bisweilen mit sehr
undeutlichen submarginalen rostbraunen Halbmondflecken. Analf eld hinter der Zelle mehr oder weniger dunkel rostrot angeflogen. Vorderfligellinge
43-46 mm. Typ. 2 d in coll. Stichel, Ecuador (Coca).
(4) Opsiphanes tamtrindi corrosus, Ditlert a forma typ. supra in marialarum anticaium fascia pallide fulvescente plus mirusve intercisa
abbreviata nec non ex parte obsoleta. Alis posticis plerumque concoloribus, saturate castaneis, quum plurimum fascia obsoleta ferruginea submarginali. —
Femina ab Ofsiphanes tamarind/ Felderi vix diversa.
Vorderfligelbinde beim & schmutzig weiss bis bleich briiunlich, mebr oder weniger unterbrochen, hinten hiufig verktrzt und manchmal zum
Teil verschwommen und undeutlich. Hinterfiigel meistens einfarbig gesittigt kastanienbraun, héchstens mit einer ganz obsoleten rotlichen Submargi-
nalbinde. Beim © charakteristische Unterschiede gegen die nérdlichere Form Osiphancs tamarvindi Felder kaum vorhanden. Ecuador. Typenin coll.
Stichel.
(5) Opsiphanes tamarindi incolumis. Habitu Ofpsiphanes tamarindi bogotani Distanti sed alarum anticarum apice minus acuto, margine
exteriore parum concavo, fascia obliqua dilute cretacea in mari, omnino non fulvescente et latiore in femina. Alis posticis fere concoloribus, apice leniter
albescente, in femina fascia obsoleta albida submarginali. Subtus alarum posticarum ocello anteriore minutiore, caeterum aeque subsecato atque in
tamarind: typ.
Nicht Ofsiphanes tamarindi bogotanus Distant. Diesem im allgemeiren ahnlich aber der Apex des Vorderfliigels weniger spitz,
Aussenrand fast gerade, sehr wenig konkav ausgeschnitten, Querbinde kreideweiss beim Gi, nicht sonderlich gelblich und breiter beim Q. Hinterflugel
fast einfarbig, am Apex leicht weisslich, beim © mit einer obsoleten, weisslichen Submarginalbinde. Die Unterseite augenfallig dadurch unterschieden,
dass das bei letztgenannter Lokalrasse stark vergrosserte und runde vordere Auge des Hinterfligels nicht viel oder gar nicht grésser, und hinten ebenso
abgetlacht ist als beider typischen Form. — Peru, Typen incoll. Stichel.
20 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
9. Opsiphanes quiteria Cramer.
a. Opsiphanes quiteria quiteria Cramer.
Papilio quiteria, Cramer, Pap. Exot. Vol. 4, p. 49, t. 313. f. A-D. (fig. typ.) (1782).
Opsiphanes quiteria, Herrich-Schiffer, in Corr. Blatt Ver. Regensb. Vol. 19. p. 64 (1865).
Opsiphanes quiteria quiteria, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 511 (1901).
Guayana, Nordl. Brasilien (Amazonas).
b. Opsiphanes quiteria meridionalis Staudinger.
Opsiphanes quiteria var. meridionalis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 213 (1887).
Opsiphanes quiteria meridionalis, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 511 (1901).
Pavonia quinteria, Burmeister, in Rev. Zool. (3), Vol. 1, p. 42, t. 6, f. 4 (biol.) (1873).
Central- und Stid-Brasilien, Paraguay, Peru.
c. Opsiphanes quiteria bolivianus Stichel.
Opsiphanes quiteria bolivianus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 512 (1901).
Opsiphanes quitevia var. boliviana, Staudinger, M.S.
Bolivien.
d. Opsiphanes quiteria quaestor Stichel.
Opsiphanes quiteria quaestor, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 512, f. 1 (fig. typ.) (1gor).
Ecuador.
c. Opsiphanes quiteria quirinus Godman u. Salvin.
Opsiphanes quivinus, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 128 (1881).
Guatemala bis Panama.
/’. Opsiphanes quiteria quirinalis Staudinger.
Opsiphanes quiteria var. quirinalis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett, Vol. 1, p. 213 (1887).
Opsiphanes quiteria quirinus ab. quirinalis, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 512 (1901).
Peru. Columbien ?, Chiriqui ? (test. Staudinger).
g. Opsiphanes quiteria badius Stichel.
Opsiphanes badius, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 513, t. 9, f. 4 (fig. typ.) (1901).
10. Opsiphanes sallei Westwood (Doubleday M. S )
a. Opsiphanes sallei sallei Westwood.
Opsiphanes sallei, Westwood (u. Hewitson) (Doubleday M. S.) in Gen, diurn. Lep. t. 57, f. 2 (fig. typ.) (1849).
Opsiphanes sallei, Westwood, eodem, Vol. 2, p. 346, n° 9 (1851).
? Caligo sallei, Boisduval, Lép. Guatém. p. 55 (1870).
Venezuela. Central-America?
»). Opsiphanes sallei mutatus Stichel.
Opsiphanes sallei mutatus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 514, f. 2 (fig. typ.) (1901).
Ecuador.
c. Opsiphanes sallei farrago Stichel.
Opsithaxes sallei farrago, Stichel, in Ins, Bérse. Vol. 21, p. 6, n’ 13 (1904) (1).
Stud-Peru.
11. Opsiphanes camena Staudinger.
Opsiphanes camena, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 213, t. 72 (fig. typ.) (1887).
.
Columbien.
(1) Opsiphanes sallei faryago. —Opsiphanes fascia ochracea alarum anticarum coalita ut in forma Ofsiphanes sallei mutatus m., fascia
submarginali posticarum versus angulum analem late rubiginose effluente ut in Opsishanes sallez typico.— Vorderfluigel mit unterbrochener oder nur lose
zusammenhangender Diskalbinde, Hinterflagel dagegen mit vollkommen gesch ossener, breiter Submarginalbinde, welche im hinteren Teil nach vorn zu
ausfliesst. Diese Unterart stellt eine Combination der typischea Form, der sie im Hinterfligel und O/siphanes sallei mutatus, dem sie im Vorderflugel
gleicht, dar. Typus in coll. Stichel.
FAM. NYMPHALID/ ar
12. Opsiphanes invirae Hiibner.
a. Opsiphanes invirae invirae Hiibner.
Potamis superba invirae, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 76, f. 1, 2 (fig. typ.) (1806-16).
Brassolis invirae, Hubner, eodem, Vol. 2, t. 66, f. 3, 4 (Q) (1816-24).
Opsiphanes invirae, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p.346, n° 12 (1851)
Opsiphanes invirae, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 514.
Guayana, Nord-Brasilien, Columbien, Venezuela.
+b. Opsiphanes invirae cuspidatus, Stichel, nov. subsp. (1).
Panama (Chiriqui) Costa-Rica, Columbien.
c. Opsiphanes invirae amplificatus, Stichel, nov. subsp. (2).
Paraguay, siidl. Brasilien.
d. Opsiphanes invirae intermedius Stichel (1901).
Opsiphaes invirae intermedius, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 515 (1901).
Opsiphanes invirae var, intermedia, Staudinger, M. S.
Amazonas super., Columbien.
C. Vorderfliigel mit einer vorn gegabelten Binde.
13. Opsiphanes cassina Felder.
a Opsiphanes cassinacassina, Felder.
Opsiphanes cassina, C. u. R. Felder, in Wien. Ent. Mon, Vol. 6, p. 122, n° 141 (1862).
Ofsiphanes cassina cassina, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 515-16, f. 3 (1901).
Nord-westl. Brasilien (Rio negro sup.).
6. Opsiphanes cassina aequatorialis Stichel. — Taf. 3, Fig. 5 (9).
Opsiphanes cassina aequatorialis, Stichel,in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 517, t. 9, f. 5 (fig. typ. 6) (190r).
Ost-Ecuador.
c. Opsiphanes cassina merianae Stichel. — Taf. 3, Fig. 4.
Opsiphanes cassina merianae, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 518 (1901).
Papilio cassiae, Fabricius, Syst. Ent. p. 483, n° 178 (1775).
Papilio cassiae, Cramer, Pap. Exot. Vol. 2, p. 14, t. 106, f. A, O (fig. typ.) (1777).
Morpho (Pavonia\ cassiaz, Godart (Latreille u.), in Enc. Meth. Zool. Vol. 9, p. 454 u. Suppl. p. 807 (part.) (1819).
Opsiphanes cassiae, Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 64 (1865).
Opsiphanes cassiaz, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 41, nv 4 (1869).
Pavonia cassiae, Burmeister, in Rev. Zool. (3), Vol. 1, p. 42, t. 6, f. 1, 2 (Biol.) (1873).
Opsiphanes cassiae, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p, 214, t. 71 (ab.) (1887).
Opsiphanes cassiae, Berg. in An. Mus. Buenos Aires, Vol. 6, p. 371 (1899).
Opsiphanes fabricii, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 72 (p. parte maj.) (1882).
Nordéstl. Siidamerica, Antillen.
d. Opsiphanes cassina fabricii Boisduval.
Caligo fabricit, Boisduval, Lép. Guatém. p. 54 (1870).
Opsiphanes fabricii, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 72 (p. parte min.) (1882).
Opsiphanes cassina fabricit, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 516 (1901).
Opsiphanes cassiae, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p.127u. eodem Suppl. p. 664 (1881, 1901).
Guatemala, Honduras, Columbien, West-Ecuador, Trinidad.
(1) Opsiphanes invirae cuspidatus. — Alarum anticarum apice acutissimo, fascia transversali postice abbreviata, posticis cum fascia
submarginali maculart, obscuriore versus angulum analem. — & Vorderfliigel mit sehr spitzem Apex, Aussenrand schmal grau gesiumt, hinten stark konvex
vortretend. Transversalbinde nur bis zum hinteren Medianast vollkommen. Dariiber hinaus manchmal nur ein obsoletes Endfleckchen. Grundfarbe sebr
intensiv. Basalfeld rotlich-grau angeflogen. Hinterfligelbinde sehr schmal, sie bildet eine Mondfleckenkette, verdiistert sich an den Radialen rostrot und
verschwindet allmahlich. Analfeld leicht rétlich angeflogen. © von sattcrer Farbe als die typische Form. Vorderfliigelbinde ebenfalls verkiirzt, so dass im
hinteren Medianfeld nur ein, seltener zwei Endfleckchen verbleiben. Vorderfliigel!inge G 38-40, 9 bis 47 mm. Typenin coll. Stichel. — Chiriqui.
(2) Opsiphanes invirae amplificatus.— Major specie ty pica. Fasciis omnibus latioribus, accuratius terminatis, praesertim in alis posticis — Eine
grossere geographische Rasse der Art, welche oberseits ungemeine Aehnlichkeit mit dem etwas grosseren Ofsiphanes quiteria mertdionalis hat und nut
durch den fast vollig ganzrandigen, nur leicht gewellten Saum des Hinterfliigels von dieser unterschieden ist, sodass ein berechtigter Zweifel entsteht,
ob Ofsiphanes invirae und Opsiphanes quiteria wirklich getrennte Arten repriisentieren. Ausschlaggebend allein ist die Unterseite, welche bei ersterer
feiner und gleichmdssiger gestrichelt, bei letzerer grob und regelloser gestrichelt und marmoriert ist. Es scheint dies ein, beide Arten trennendes Charakte-
Tisticum zu sein. Typen in. coll. Stichel.
22 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
e. Opsiphanes cassina chiriquensis Stichel.
Opsiphanes cassina chiviquensis, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 517 (1901).
Panama (Chiriqui).
f. Opsiphanes cassina notandus, Stichel.
Opsiphanes cassina notanda, Stichel, in Ins. Bérse, Vol. 21. p. 21, n° 23 (1904) (1).
Siid-Peru.
7. GENUS OPOPTERA, AuRIVILLIUS
Opoptera (Subgen.). Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. tg, p. 75 (spec. typ. O. syme) (1882).
Opoptera (Gen.). Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 488 (1901).
Caligo. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 71, f. 3, 4 (spec. C. syme) (1816-24); Doubleday, List Ins.
Brit. Mus. p. 117 (part.) (spec. C. syme) (1844); Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson,
Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342 (part.) (spec. C. alcimedon fiir O. syme) (1851); Kirby, Cat. diurn.
Lep. p. 127 (part.) (spec. C. alcimedon fiir O. syme) (1871).
Morpho. Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 435 (part.) (spec. M. aorsa, M. syme,
M. acadina fiir O. syme) (1819).
Pavonia. Godart, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, Suppl. p. 807 (1819); Guérin u. Ménéville, Icon. Régne An.
Vol. 3, t. 79, f. 1 (spec. P. acadina fiir O. syme) (1829); Griffith, Anim. Kingd. Vol. 15, p. 5go (part.)
(spec. wie vor, t. 47, f. 1) (1835); Boisduval, Spéc. Gén. Lép. Vol. 1, t. 12, f. 2 (spec. wie vor)
(1836); Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep.
t. 54, f. 3 (spec. P. aorsa) (1849).
Opsiphanes. Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. p. 345 (part.) (spec.
O. syme, O. aorsa) (1851); Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Pétersb. Lép. p. 38 (part.) (spec.
O. acadina fiir O. syme) (1857); Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 64
(part.) (spec. O. syme, O. aorsa) (1865); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 125 (part.) (spec. O. syme,
O. aorsa) (1871); Hopffer, in Ent. Zeit. Stett. Vol. 35, p. 358 (spec. O. arsippe) (1874); Staudinger
(u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 211 (part.) (spec. O. arsippe, O. aovsa, O. syme, O. sulcits)
(1887); Godman u. Salvin, in Ann. Nat. Hist. Ser. 6, Vol. 14, p. 95 (spec. O. staudingert) (1894) ;
Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 50 (part.) (spec. O. syme) (1901).
Eryphanis. Kirby, Cat. diurn. Lep. App. p. 646 (E. alcimedon fiir O. syme) (1871).
Allgemeine Charaktere. — Kopf klein, Augen rund gewélbt, nackt. Stirn schopfartig behaart.
Palpen dicht beschuppt. Basal- und Mittelglied ventral zottig behaart. Basalglied kurz, schwach
gekriimmt. Mittelglied etwa dreimal so lang, aufwirts gebogen, dorsal ohne eigentlichen Schopf, am
distalen Teil die Haare aber stiirker abstehend. Endglied glatt, eiférmig, spitz, nur wenig iiber den Kopf
hervorragend. Antennen diinn, distal allmahlich wenig verdickt, etwa 1/2-2/3 der Lange des Vorder-
fliigels. Thorax klein, reichlich schlicht behaart. Vorderfliigel abgerundet dreieckig. Vorderrand proximal
stark gekriimmt. Apex rundlich, Aussenrand flach konvex oder hinter dem Apex eckig hervortretend.
Hinterrand gerade. Costalis und Subcostalis deutlich und in ihrem ganzen Verlauf fast gleichmiassig
getrennt. Subcostalis fiinfastig. Subcostalis 1 und 2 dicht vor dem Zellende, Subcostalis 3 in betracht-
licher Entfernung jenseits desselben entspringend, alle drei in den Vorderrand oder der dritte Ast in den
Apex miindend. Subcostalis 4 und 5 bilden eine lange Gabel, erstere in den Apex oder kurz hinter
(1) Opsiphanes cassina notandus. G Habitu et magnitudine Ofsiphanis cassinae chiriguensis m., sed ramo ultracellulari fasciae transversalis
bifidae in alis anticis angustiore extusque dentato. Alis posticis in costa vix luridis, fascia submarginali satis lata. vivaciter rubiginosa.
Nichst Opsiphanes cassina chiriguensis m., indes die Vorderfliigelbinde in ihrem ausserhalb der Zelle liegenden Ast sehr schmal und distal
ungewiss ausgezackt. Hinterfliigel an der Costa gar nicht oder nur wenig rotlich aufgehellt, Submarginalbinde lebhaft rostfarben und ziemlich breit. Typus
in coll. Stichel.
FAM. NYMPHALIDZ® 23
demselben, letztere in den Aussenrand auslaufend. Zelle breit, V DC kurz, winklig zur Subcostalis
gestellt und von MDC in scharfer, wurzelwarts einspringender Kriimmung fortgesetzt. H D C flach
gebogen, steil rechtwinklig zur Mediana gestellt. SM und die drei Medianadste annahernd parallel.
Hinterfliigel elliptisch, Apex abgerundet oder schwach eckig. Aussenrand gewellt oder gerade, mit oder
ohne schwanzartigem Zipfel an der verlaingerten vorderen Mediana. Costalis in unmittelbarer Nahe des
Vorderrandes, diesem folgend. Zelle kurz und schmal, unter halber Fligellinge. Praecostalzelle langer
als breit, rhomboidal. Hintere Mediana beim © nichst der Zelle verdickt, mit faltenartiger oder
taschenartiger Bildung in der Membran. Abdomen klein, schlank, etwa halb so lang als der Fliigel-
Hinterrand. of ohne seitliche Reibefliche oder Wiilste an demselben, dagegen meist mit einem kleinen
Haarpinsel im hinteren Teil der Zelle des Hinterfliigels oder anderen, bei den Gruppen-Diagnosen
naiher bezeichneten geschlechtlichen Auszeichnungen.
Schema des Fliigelgeiders. — Taf. 2, Fig. |.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Arten dieser Gattung sind Bewohner
Siid- Americas, ihre Verbreitung erstreckt sich Gstlich auf die siidlichen Teile Brasiliens, westlich auf
Bolivien und Peru, sowie auf Central-America.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Sectio |. DESMIDOCOSMETI
Apex des Vorderfliigels geeckt oder rund, Hinterfliigel bein & mit Haarpinsel in der
Zelle oder Biischelbildung an der Submediana.
Cohors |. AORSIFORMES
Vorderfliigel hinter dem Apex geeckt, Subcostalis 3 in den Vorderrand, Subcostalis 4
in den Apex auslaufend.
A. Gf Ohne Haarpinsel in der Zelle des Hinterfliigels, aber mit biirstenartigem Haarbiischel an der Submediana.
1. Opoptera aorsa Godart.
a. Opoptera aorsa aorsa Godiart.
Morpho aorsa, Godart (Latreille u.), in Enc. Meth. Zool. Vol. 9, p. 447, n° 23 (1819).
Pavonia aorsa, Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood (u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. t. 54,f 3
(fig. typ.) (1849).
Opsiphanes aorsa, Westwood, eodem, Vol. 2, p. 345, n° 4 (1851).
Opsiphanes (Opoptera) aorsa, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 75 (1882).
Ofoptera aorsa aorsa, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 489 (1901).
Stid-Brasilien.
}. Opoptera aorsa hilara Stichel.
Ofoptera aorsa hilara, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 489 (1902).
Ost-Ecuador, Peru.
B. of mit kleimem Haarpinsel im hinteren Teil dey Zelle des Hinterfliigels, der teilweise in einer taschenartigen Falte
an der hinteren Mediana versteckt ist.
2. Opoptera arsippe Hopffer.
a. Opoptera arsippe arsippe Hopffer.
Ofsiphanes arsippe, Hopfter, in Ent. Zeit. Stett. Vol. 35, p. 358, no 64 (1874).
Ofoptera arsippe, Aurivillius, in Sy. Akad. Handl. Vol. 19, p. 75.
Peru.
24 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
b. Opoptera arsippe bracteolata Stichel. — Taf. 4, Fig. 3.
Opoptera arsippe bracteolata, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 490 (1901),
Bolivien.
Cohors Il. SYMIFORMES
Vorderfliigel mit abgerundetem Apex, Subcostalis 3 und 4 in die apicale Rundung
auslaufend. Hinterfliigel ohne schwanzartigen Fortsatz.
A. & ohne Haarpinsel in der Zelle des Hinterfliigels.
3. Opoptera fruhstorferi Réber.
Opsiphanes fruhstorferi, R6ber, in Ent. Nachr. Vol. 22, p. 323 (1896).
Opoptera fruhstorferi, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 490 (1901).
Opsiphanes sosius (socius ?), Staudinger M. S.
Siuid-Brasilien.
B. of mit hleinem, teilweise in einer taschenartigen Falte an der hinteren Mediana versteckten Haarpinsel 1m der
Zelle des Hinterfliigels.
4. Opoptera sulcius Staudinger. — Taf. 4, Fig. 4.
Opsiphanes sulcius, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 212 (1887).
Opoptera sulcius, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 490 (1901).
Stid-Brasilien.
5. Opoptera syme Hiibner.
a. Opoptera syme syme Hiibner.
Caligo syme, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 284, f. 3-4 (fig. typ.) (1816-24).
Pavonia syme, Boisduval, Spéc. Gén. Lép. Vol. 1, t. 12, f. 2 (1836).
Opsiphanes syme, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn, Lep. Vol. 2, p. 345, n° 1 (1851).
Opopoptera syme,-Aurivillius, in Sy, Akad. Handl. Vol. 19, p. 75 (1882).
Opsiphanes syme, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 212, t. 71 (1887).
Opsiphanes syme, Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 50, t. 284 (71) (1901).
Morpho (Pavonia) acadina, Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 451, n° 32 u. Suppl. p. 807 (1819).
Pavonia acadina, Guerin & Ménéville, Icon. Régne An. Ins. Vol. 2, p. 487, t. 79, f. 1 (1829-44).
Pavonia acadina, Griffith, Anim. Kingd. Vol. 15, t. 47, f. 4 (1835).
Opsiphanes acadina, Ménétries, Cat. Acad, Imp. St-Pétersb. Lep. p. 38, n° 646 (1857).
Papilio alcimedon, Dalman, Anal, Ent. p. 41, n° 7 (1823).
Caligo alcimedon. Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 13 (1851).
Caligo alcimedon, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 128, n° 8 (1871).
Eryphanis alcimedon, Kirby, eodem, App. p. 646 (1871).
Sud-Brasilien ; Rio-de-Janeiro.
bd. Opoptera syme fumosa Stichel.
Opoptera syme fumosa, Stichel, Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 491 (1901).
Sud-Brasilien : Espirito Santo.
Sectio Il. PERAGNOSTI
Vorderfliigel mit spitzerem Apex. Hinterfliigel ohne Schwanzanhinge.& ohne eigentliche
Haarpinsel. Die hintere Mediana des Hinterfliigels entspringt unweit der
Fliigelwurzel und bildet dicht hinter der Zelle eine tiefe, mit mehlartigen
Staubschuppen ausgefiillte Tasche.
6. Opoptera staudingeri Godman u. Salvin.
Ofsiphanes staudingeri, Godman u. Salvin, in Ann. Nat. Hist. Ser. 6, Vol. 14, p. 95 (1894).
Opsiphanes staudingeri, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop.Suppl.p. 665, t. 107. n° 17 (fig. typ.) (1901)
Opoptera staudingeri, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 491.
Panama: Chiriqui.
FAM. NYMPHALID AS 25
8. GENUS CATOBLEPIA, STICHEL
Catoblepia. Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p 491 (1901).
Potamis. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 73, f. 1-2 (spec. P. superba bevecyntia fir berecynthia)
_ (1806-16).
Brassolis. Hiibner, Verz. Schmett. p. 5c (part.) (spec. B. berecynthia, B. xanthis fiir xanthus) (1816);
Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 67, f. 1-2 (spec. B. amphirhoé) (1816-24).
Morpho. Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 452 (part.) (spec. M. berecynthus, M. xanthus)
(1819).
Pavonia. Godart, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, Suppl p. 807 (1819). Doubleday, List Ins. Brit-Mus. Vol. 1,
p. 108 (part.) (spec. P. berecynthus, P.xanthus) (1844); Burmeister, Descr phys. Rép. Argent. Lép.
p. 22, n° 3 (part.) (spec. P. xanthus fiir amphirhoé) (1879).
Opsiphanes. \Vestwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 344
(part.) (spec. O. soranus, O. berecynthus) (1851); Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Pétersb. Lép. p. 38
(part.) (spec. O. xanthus) (1855); Herrich-Schaffer, in Corr. Blatt Ver. Regensb. Vol. 19, p. 64
(part.) (1865); Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 40 (part.) (spec. O. xanthus, O. berecynthia) (1869); -
Hewitson, in Ent. Mag. Walker, Vol. 6, p. 177 (spec. O. orgetorix) (1870); Kirby, Cat. diurn.
Lep. p. 125 (part.) (1871); Méschler, in Verh. Zool. Bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 321 (spec.
O. xanthus) (1876); Hewitson, Exot. But. Vol. 5, Opsiph. t. 1, f. 1-2 (spec. O. orgetorix) (1873);
Godman u. Salvin. in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 126 (part.) (spec. O. amphirhoé, O.
orgetoryx, O. xanthicles) (1881); Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 75 (part.) (1882); Stau-
dinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192 (part.) (1887); Kirby, in Hiibner u. Geyer,
Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 5o (part.) (spec. O. xanthus, O. berecynthus) (1901).
Caligo. Boisduval, Lép. Guatém. p. 54 (part.) (spec. C. berecynthia ? = xanthicles) (1870).
Allgemeine Charaktere. — Kopf klein, Augen rundlich gewolbt. nackt. Stirn kurz behaart.
Palpen dicht und glatt beschuppt und kurz behaart, die am distalen Teil des Mittelgliedes befindlichen
Haare schopfartig abstehend. Basalglied kurz, schwach gekriimmt, Mittelglied etwa dreimal so lang,
aufwarts gebogen. Endglied spitz, nur wenig ttber den Kopf hervorragend. Antennen diinn, gegen die
Spitze allmahlich etwas verdickt, in einem Falle (C. amphirhoé) kraftiger entwickelt, stets unter halber
Lange des Vorderfliigels. Thorax klein, dicht behaart. Vorderfliigel mit stark gekriimmtem Vorderrand,
hervorspringendem, ziemlich spitzen Apex, konkavem Aussenrand, geradem oder proximal etwas
gelapptem Hinterrande. Submediana proximal meist filzig behaart. Costalis und Subcostalis deutlich
schmal getrennt. Subcostalis 5astig, Subcostalis 1 und 2 kurz vor dem Zellende, erstere indes in einem
Falle (C. amphirhoé) etwas naher wurzelwarts entspringend, beide in den Vorderrand auslaufend, Subcos-
talis 3 auf der Halfte zwischen Zellende und Apex, ebenfalls in den Vorderrand, Subcostalis 4 und 5 eine
kurze Gabel bildend, jene in den Apex, diese kurz hinter demselben in den Aussenrand einmiin-
dend. Zelle breit, vordere Ecke abgerundet, V DC missig lang entwickelt, von MDC in flachem,
basalwarts gekriimmten Bogen und H DC in schrag-gestreckter Richtung fortgesetzt. Diese miindet
fast oder ganz rechtwinklig in die Mediana. SM, H M und MM annihernd parallel und gerade,
V M zuweilen etwas mehr gekriimmt. Mediana an der Wurzel kurz blasig aufgetrieben. Hinterfliigel
fast elliptisch, Apex abgerundet. Aussenrand ganz oder gewellt. Costalis dicht hinter dem Vorderrand,
diesem folgend. Praecostalzelle breiter als lang, rhombisch oder transversal rhomboidal. Zelle schmal,
etwa von halber Lange des Fliigels. Beim < die Membran seitlich der hinteren Mediana dicht an der
Zelle mehr oder weniger faltig, die Ader in einem Falle (C. amphivhoé) stark schlauchartig aufgetrieben, im
hinteren Teil der Zelle ein Haarpinsel oder im vorderen Teil derselben hinter der Subcostalis ein
Haarbiischel. In allen Fallen an der SM auf blanker Reibeflaiche ein kleiner Haarpinsel, zuweilen
26 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
ein biirstenartiger Haarbiischel in oder an einer Falte zwischen SM und H M oder mit einem breiten
Streifen langer, schlichter, nach aussen gerichteter Haare auf einer stumpf-mehligen Flache zwischen
diesen Adern. Abdomen schlank aber kurz, seltener robust, beim ¢ beiderseits mit Reibewiilsten.
Schema des Fliigelgeiders. — Taf. 2, Fig. 2.
Geographische Verbreitung der Arten, — Die Vertreter der Gattung sind iiber Central- und
Siid-America verbreitet, von Nicaragua und Panama einerseits durch Guayana bis Siid-Brasilien,
andererseits durch Columbien bis Peru.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Sectio |. DYOPHTHALMI
Unterseite des Hinterfliigels mit zwei Ocellen.
A. ot mit einem Haarpinsel im hinteren Teil dev Zelle des Hinterfliigels.
1. Catoblepia xanthus Linné.
a. Catoblepia xanthus xanthus Linné.
Papilio xanthus, Linné, Syst. Nat. (10), Vol. 1, p. 472, n° 87 (1758).
Papilio xanthus, Linné, Mus. Lud. Ulr. p. 267 (1764).
Papilio xanthus, Clerck, Icon. Ins. t. 34, f. 1-2 (fig. typ.) (1764).
Morpho (Pavonia) xanthus, Godart (Latreille u.), in Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 453, n° 40 u. Supp. p. 807 (1819).
Pavonia xanthus, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Vol. 1, p. 118 (part.) (1844).
Opsiphanes xanthus, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 345, n° 7 (1851).
Opsiphanes xanthus, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 40 (1869).
Opsiphanes xanthus, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 74 (part.) (1882).
Opsiphanes xanthus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 213 (1887).
Catoblepia xanthus xanthus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 492 (1901).
Brassolis xanthis, Hiibner. Verz. Schmett. p. 50, n° 470 (1816),
Guayana.
6. Catoblepia xanthus soranus Westwood,
Opsiphanes sovanus, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen, diurn. Lep. Vol. 2, p. 345, n° 5,
Fussnote (1851).
Catoblepia xanthus soranus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 493 (1901).
Opsiphanes xanthus, Aurivillius, in Sv., Akad. Handl. Vol. 19, p. 74 (part.) (1882).
Nord-Brasilien : Para, Unter. Amazonas.
c. Catoblepia xanthus dohrni Stichel. — Taf. 4, Fig. 5 (9).
Catoblepia xanthus dohrni, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 493, t. 9, f. 1 (fig. typ. GO) (1901).
Catoblepia xanthus dohrni, Stichel, in Ins, Boérse, Vol. 21, p. 6, n& 12 (2) (1904).
Ecuador, Peru, Amazonas (Rio Maues).
2. Catoblepia xanthicles Godman u. Salvin.
a. Catoblepia xanthicles xanthicles Godman u. Salvin.
Opsiphanes xanthicles, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Lep. Rhop. Vol. 1, p. 130, t. 12, f. 1, 2
(fig. typ. als O. XNanthus) (1881).
Opsiphanes xanthicles, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 75, n° 9 (188
Opsiphanes xanthicles, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 213 (188
Panama.
b. Catoblepia xanthicles belisar Stichel, nov. subsp. (1).
Opsiphanes belisay, Staudinger M.S.
Opsiphanes xanthicles, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 494 (forma transiens ad subsp. wxanthicles x.) (1901).
Ober. Amazonas, Ecuador, Bolivien.
(1) Catoblepia xanthicles belisay. Differt a forma typica in mari alis posticis cum fascia rubiginosa splendida marginalisatis lata, in femina fascia
submarginali ochracea alarum posticarum versus aligulum analem rubiginose effluente. — Gi von der typischen Form durch eine lebhaft rostrote,
ziemlich breite und vollkommene Saumbinde des Hinterflugels unterschieden, beim © fliesst die, gegen das Ende vom Rande etwas abgerickte
ockerfarbene Hinterfligelbinde im Analwinkel in sch6n rostroter_Zerstiubung ‘nach vorn zu aus. r G, Typus in coll. Ch. Oberthur : Bolivien : Prov.
Yungas, r Gr © transit. ad form. typ in coll. Stichel : Ecuador, Coca.
FAM. NYMPHALIDZ® 27
3. Catoblepia orgetorix Hewitson.
Catoblepia orgetoryx, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 496 (1901).
a, Catoblepia orgetorix orgetorix Hewitson.
Opsiphanes orgetorix, Hewitson, in Ent. Mag. Walker. Vol. 6, p. 177 (1870).
Opsiphanes orgetorix, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 5. Opsiphanes, t. 1, f. 1, 2 (fig. typ. 2) (1873),
Opsiphanes orgetorix, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop.Vol. 1, p. 129 (1881).
Catoblepia orgetoryx orgetoryx, Stichel, in Berl, Ent. Zeit. Vol. 46, p. 496 (1901).
Nicaragua, Panama.
6. Catoblepia orgetorix magnalis. Stichel.
Catoblepia orgetoryx magnalis, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 495, t. 9, f. 2 (fig. typ.) (1907).
Opsiphanes herodius, Boisduval M. S.
Ecuador.
4. Catoblepia amphirhoe Hiibner.
Brassolis amphirhoé, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 67, f. 1, 2 (fig. typ.) (1816-24).
Ofsiphanes amphirhoé, Herrich-Schifter, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p 64 (1865).
Opsiphanes amphi; hoé, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer, Rhop. Vol. 1, p. 129 (1881).
Ofpsiphanes amphirhoé, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 75 (1882).
Opsiphanes amphirhoé, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 213 (1887).
Catoblepia amphirhoé, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 496 (1901).
Opsiphanes xanthus, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 126 (1871).
Pavonia xanthus, Burmeister, Descr. phys. Rép. Argent. Lep. p. 22, n° 3 (1879).
Siid-Brasilien, Argentinien, Paraguay, Guatemala.
B. of Ohne Haarpinsel in dey Zelle des Hinterfliigels.
5. Catoblepia versitincta Stichel.
blepia versitincta, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 495, t. 9, f. 2 (fig. typ.) (1901).
Opsiphanes selectus, Staudiger M. S.
Surinam, Cayenne.
Sectio Il. POLYOHPTHALMI
Hinterfliigel unterseits mit einer gebogenen Reihe von 5-6 Ocellen. o oberseits mit
einem Haarpinsel im hinteren Teil der Zelle, einem kleineren an der Sub-
mediana und einem biirstenartigen Haarbiischel zwischen dieser und dem
hinteren Medianast.
6. Catoblepia berecynthia Cramer.
Catoblepia berecynthus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 497 (1901).
a. Catoblepia berecynthia berecynthia Cramer.
Papilio berecynthia, Cramer, Pap. Exot. Vol. 2, t. 184, f. B. C. (fig. typ.) (1779).
Potamis superba berecyntia, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 73, f. 1, 2 (1806-16),
Brassolis berecynthia, Hibner, Verz. Schmett, p. 50, n° 469 (1816).
Ofpsiphanes berecynthia, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 40 (1869).
Papilio berecynthius, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 6, p. 61, t. 130, f. 2, 3 (1793).
Morpho (Pavonia) bevecynthus, Godart (Latreille u.),in Enc. Méth. Zool.Vol. 9, p. 453, n° 39 u. Suppl. p.807 (1819).
Opsiphanes berecynthus, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 346, n° 8
1851).
Ofsiphanes berecynthus, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 126, no 10, und Suppl. p. 716 (1871, 1877).
Ofpsiphanes berecynthus, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 76, n° 10 (1882).
Opsiphanes berecynthus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 212 (1887).
Opsiphanes berecynthus, Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett, Neue Ausg. p. 51 (1901).
Catoblepia berecynthus berecynthus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 497 (1901).
Papilio octhon, Fabricius, Spec. Ins. Vol. 2, p. 59, n° 260 (1781).
Opsiphanes oethon, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 343, n° 11 (1851).
Opsiphanes aethon, Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 64 (1865).
Opsiphanes oethon, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 127, n° 16 (1871).
Nordl. Brasilien (Amazonas), Franz., Engl. Guayana.
28 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
6. Catoblepia berecynthia velata Stichel.
Catoblepia berecynthus velatus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 498 (1901).
Surinam.
c. Catoblepia berecynthia berecynthina Hopffer.
Opsiphanes berecynthina, Hopffer, in Ent. Zeit. Stett. Vol. 35, p. 358 (1874).
Opsiphanes berecynthus var. berecynthina, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 212 (1887)
Opsiphanes berecynthus berecynthina, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 497 (1901).
Opsiphanes vercingetoryx, Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 72 (1887).
Peru, Ecuador.
d. Catoblepia berecynthia luxoriosa Stichel.
Catoblepia berecynthus luxoriosus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 497 (1901).
Columbien.
7. Catoblepia generosa Stichel.
Catoblepia generosa, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 408, t. 9, f. 3 (fig. typ.) (1901).
Ecuador, Ober.-Amazonas.
9. GENUS SELENOPHANES, STAUDINGER
Selenophanes (Subgenus), Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett, Vol. 1, p. 212 (1887) (spec. typ.
S. cassiope); S. (Genus), Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 499 (1g0r).
Brassolis. Hiibner, Verz. Schmett. p. 50 (part.) (spec. B. casstope) (1816).
Morpho. Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 435 (part.) (spec. M. caryatis fiir
S. cassiope) (1819).
Pavonia. Godart, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, Suppl. p. 807 (1819).
Opsiphanes. Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 344
(part.) (spec. O. casstope) (1851); Ménétries, Cat. Acad Imp. St.-Pétersb. Lep. Vol. 2, p. 38 (part.)
(spec. O. cassiope) (1857); Herrich-Schaffer, in Corr. Blatt Ver. Regensb. Vol. 19, p. 64 (part.)
(spec. O. cassiope) (1855); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 125 (part.) (spec. O. cassiope) (1871) ; Méschler,
in Verh. Zool. bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 321 (spec. O. casstone fiir cassiope) (1876); Godman u. Salvin,
in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 126 (part.) (spec. O. josefhus) (1881); Aurivillius, in
Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 75 (part.) (spec. O. cassiope, O. josephus) (1882).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, Augen rund gewélbt, nackt. Stirn kurz behaart. Palpen
dicht und glatt beschuppt und behaart. Behaarung am Basal- und Mittelglied ventral struppig
abstehend. Basalglied kurz, gekriimmt, Mittelglied etwa dreimal so lang, aufwarts gebogen, am distalen
Teil dorsal mit starker, fast schopfartig abstehenden Haaren. Endglied glatt, spitz, nur wenig tiber den
Kopf hervorragend. Antennen kraftig, etwa von halber Lange des Vorderfliigels, distal allmahlich und
schwach verdickt ohne eigentliche Kolbenbildung. Thorax kraftig, dicht und schlicht behaart,. Abdomen
glatt behaart, etwa von halber Lange des anliegenden Fliigelrandes. Vorderfliigel fast dreieckig,
Vorderrand proximal gestreckt, fast ohne Kriimmung, distal stark convex gekriimmt. Aussenrand hinter
dem rundlichen Apex konkav ausgeschnitten, gewellt oder ganz. Costalis und Subcostalis schmal aber
deutlich in ganzer Linge getrennt. Subcostalis 5astig. Subcostalis 1 und 2 entspringen vor dem Zellende,
erstere in einiger Entfernung wurzelwadrts von demselben, letztere nahe der vorderen Zellecke.
Subcostalis 3 steht etwa in der Mitte zwischen letzterer und dem Apex, alle drei verlaufen in den
Vorderrand. Subcostalis 4 zweigt sich kurz vor dem Apex ab, miindet in diesen und bildet mit
Subcostalis 5, welche in den Aussenrand lduft, eine kurze Gabel. Zelle lang, massig breit, distal
vorn und hinten fast rechtwinklig begrenzt. VD C sehr kurz, M D C von derselben scharf winklig
abgezweigt, ganz flach gekriimmt und ohne Absatz von der etwas langeren H D C in gleicher Richtung
FAM. NYMPHALIDZ® 29
fortgesetzt. Mediana nachst der Wurzel beim ¢ blasig aufgetrieben. Hinterfliigel mit schwach gekriimmtem
Vorderrand, dieser proximal stark gelappt. Apex abgerundet. Analwinkel meist ziemlich deutlich abgesetzt,
nur bei einer Art (S. joseshus) abgerundet. Praecostalzelle breiter als lang, sogar sehr schmal rhombisch,
Praecostalis ziemlich gestreckt, nur distal leicht wurzelwarts gebogen, die Costalis bedeutend iiber-
ragend. Zelle schmal und lang, tiber der Halfte der Fliigelflache, distal spitz keilf6rmig geschlossen.
Abdomen kraftig, wenngleich nicht unverhdltnismassig robust. Gf ohne seitliche Reibewiilste am
Abdomen und ohne Haarpinsel in der Zelle des Hinterfliigels, dagegen in einigen Fallen dicht an der
Praecostalzelle ein nach vorn gerichteter Haarbiischel, in einem Falle ein dreieckiger schwarzer, sammet-
artiger Duitfleck zwischen M M und H M (S. josephus).
Schema des Fliigelgeaders. — Taf. 2, Fig. 3.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Selenophanes - Arten leben in den nérdlichen
und westlichen Regionen Siid-Americas. Das Verbreitungsgebiet dehnt sich von Guatemala bis Guayana
und Nord-Brasilien einerseits und durch Columbien bis Bolivien andererseits aus.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Sectio 1. NEPHROCHORIA
Ocellen der Hinterfliigel-Unterseite sichel- oder nierenférmig. o& mit filzigem,
erhabenem, laénglich schmalem Duftfleck vor der Submediana auf der Unter-
seite des Vorderfliigels.
A. & vor der Subcostalis oberseits des Hinterfliigels mit mehliger Reibeflache ohne Haar pinsel.
1. Selenophanes cassiope Cramer.
a. Selenophanes cassiope cassiope Cramer.
fope, Cramer. Pap. Exot. Vol. 1, p. 88, t. 57, f. A und B (fig. typ.) (1779).
Psi tssiope, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep.Vol. 2, p. 345,n°6 (1851).
Opsiphanes (Selenophanes) cassiope. Staudinger (u. Schatz), Exot. Smett. Vol. 1, p. 211, 212 (1887).
Selenophanes cassiope cassiope, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 501 (1901).
Papilio cassiofus, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 6, p. 53, t. 128, f. 3, 4 (1793).
Morpho (Pavonia) caryatis, Godart (Latreille u.), in Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 454, n° 41 (Suppl. p. 807) (1819).
Opsiphanes cassione, Méschler, in Verh. Zool. Bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 321 (1878).
Surinam, Cayenne, Nord-Brasilien (Amazonas).
). Selenophanes cassiope amplior Stichel.
Selenophanes cassiope amplior, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 501 (1901).
Columbien, Peru.
c. Selenophanes cassiope cassiopeia Staudinger.
Opsiphanes (Selenophanes) cassiope var. cassiopeia, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 211, 212,
t. 71 (fig. typ.) (1887).
Sclenophanes cassiope cassiopeia, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol 46, p. 50x (1901).
Nord-West-Brasilien (Ober. Amazonas), Peru.
d. Selenophanes cassiope andromeda Stichel. — Taf. 5, Fig. 3a, b.
Selenophanes cassiope andromeda, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 501 (1901).
Opsiphanes andromeda, Staudinger M. S.
Bolivien.
B.S vor der Subcostalis nichst der Praecostalzelle oberseits des Hinterfliigels mit einem nach vorn gerichteten Haarbiischel.
2. Selenophanes supremus Gtichel.
a. Selenophanes supremus supremus Stichel.
Selenophanes supremus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 5or, t. 8, f, 1 (fig. typ.) (1901).
Ecuador.
30 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
6. Selenophanes supremus ditatus Thieme.
Selenophanes supremus var. ditatus, Thieme, in Ins. Borse, Vol. 19, p. 339 (1902) und in Berl. Ent. Zeit. Vol. 48,
S. B. p. (12). (1903).
Peru.
Sectio Il. CYCLOCHORIA
Ocellen der Hinterfliigel-Unterseite oval oder rundlich. & mit schwarzem, nahezu
dreieckigen Duftfleck swischen H M und M M der Hinterfliigel-Oberseite.
3. Selencphanes josephus Godman u. Salvin.
a. Selenophanes josephus josephus Godman u. Salvin.
Opsiphanes josephus, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer, Rhop. Vol. 1, p. 126, t. 13, f. 3, 4 (fig. typ.) (1881).
Selenophanes josephus josephus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 503 (1901).
Guatemala.
b. Selenophanes josephus excultus Stichel.
Selenophanes josephus excultus, Stichel, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 503 (1901).
Columbien.
10. GENUS ERYPHANIS, BoISDUVAL
Eryphanis. Boisduval, Lép. Guatém., p. 57 (spec. typ. : E. automedon, Cr. = polyxena Meerb.) (1870);
Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 646 (1871); Kirby. eodem, Suppl. p. 717 (1877); Scudder, in Proc.
Amer. Acad. Sc. p. 168 n° 404 (1875); Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1,
p. 136 (1881); Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 194 (1889).
Moera. Hiibner, Verz. Schmett. p. 51 (part.) (spec. MW. automedaena fiir automedon Cr. = polyxena Meerb.)
(1816).
Morpho. Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9,p. 435 (part.) (1819).
Pavonia. Godart, Enc. Méth. Zool. Vol. g. Suppl., p. 807 (1819); Doubleday, List Ins. Brit. Mus.
p. 118 (part.) (spec. P. automedon) (1844); Felder, in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 423 (spec.
P. lycomedon) (1862); Bates, in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 249 (spec. P. automedon fiir P. lycomedon)
(1863); Hewitson, Exot. Butt. Vol. 5, t. Pavonia, f. 1-2 (spec. P. seleucida, P. zolvizora) (1876).
Caligo, Sectio Il. Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342
(spec. C. automedon, C. rveevesti, C. aesacus) (1851); Ménétries, Cat. Acad. Imp. St-Pétersb. Lép.
Vol. 1, p. 38 (part.) (1855); Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 167 (part.) (1858); Herrich-Schaffer,
in Corr. Blatt Ver. Regensb. Vol. 18, p. 55 (part.) (1864); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 129 (part.)
(1871); Butler u. Druce, in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 339 (spec. C. automedon fiir lycomedon)
(1874); Weymer (u. Maassen), in Reiss u. Stiibel, Reisen Siid-Amer. Lep. p. 62, n° 38 (spec.
C. zolvizora) (1890).
Opsiphanes. Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep.
t. 57, f. 3 (spec. O. reevesi?) (1849); W. Miiller, in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 598 (spec. ead.) (1886).
Eryphane. Boisduval, Lép. Guatém. p. 58 (spec. E. aesacus) (1870).
Euryphanis. Godman u. Salvin, in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 122, n° 56 (spec. E. automedon) (1880).
Allgemeine Charaktere. — Kopf klein, Augen oval gewélbt, nackt. Palpen dicht und glatt
anliegend behaart, dorsal mit kleinem, der Stirn anliegenden Schopf. Basalglied kurz, langer und straff
behaart, Mittelglied etwa dreimal so lang, aufwiarts gerichtet. Endglied glatt, kurz und spitz, den Kopf
etwas iiberragend. Antennen diinn, distal kaum merklich verdickt, unter halber Lange des Vorderfliigels.
Thorax klein, 1eichlich und schlicht behaart, Abdomen verhiltnismdssig kurz, beim © seitlich mit
FAM. NYMPHALID/ 31
Reibewiilsten. Vorderfliigel rechtwinklig dreieckig, Vorderrand leicht gekrimmt, Apex abgerundet,
Aussenrand etwas konkav, Analwinkel abgerundet rechteckig, Hinterrand fast gerade. Subcostalis der
Costalis teilweise ziemlich dicht anliegend, 5astig. Subcostalis 1 entspringt etwa am letzten Viertel der
Entfernung von der Basis bis zum Zellende, Subcostalis 2 dicht vor letzterem, Subcostalis 3 in betracht-
licher Entfernung hinter ihm, alle drei miinden in den Vorderrand. Subcostalis 4 und 5 bilden eine
schmale, in die Rundung des Apex miindende Gabel. Zelle breit, distal schief nach hinten abgeschnitten
ohne wesentlich nach dem Aussenrand vorzuspringen. V DC gerade, schrag in der Richtung der VR
verlaufend, MDC etwa doppelt so lang, leicht gekriimmt, gegen den Aussenrand gerichtet,
HDC steiler schrég nach hinten gestellt, etwas kurzer als MDC und mit der Mediana nahezu
einen rechten Winkel bildend. S M geschweift, die 3 Medianaste unter sich etwa in gleichem Abstande
und parallel gelegen. Hinterfliigel fast elliptisch. Vorderrand etwas abgeflacht, Apex stumpfwinklig,
abgerundet. Aussenrand leicht gewellt, ganz schwach konvex, an MM meist mehr oder weniger
eeeckt, Analwinkel ginzlich abgerundet, Hinterrand vorn stark gelappt. Praecostalis einfach, steil
schrag wurzelwarts gerichtet. Praecostalzelle sehr klein, langlich, wenig geeckt, proximal zugespitzt,
Zelle nicht sehr breit, von halber Lange des Fliigels, M DC stark gekriimmt, dadurch die Zelle vorn
eingebuchtet. Zellschluss stumpf keilformig. g% mit blanker Reibefliche an der S M des Hinterfliigels,
da, wo der betreffende Teil der Membran an dem Abdomen anliegt, ohne Haarpinsel oder mit einer
sparlich biirstenartigen Haarpartie zwischen S M und Hinterrandsader; im Analteil auf silber-grau oder
braun glanzender Fliche ein mehr oder weniger grosser ovaler Fleck von hellockergelben Duftschuppen
zwischen S M und H M, dicht an ersterer.
Schema der Fliigelgedders. — Taf. 2, Fig. 5.
Geographische Verbreitung der Arten. — Das Fluggebiet der Angehdrigen dieser Gattung
erstreckt sich iiber das nérdliche Siid-America und durch. Central-America bis Mexico. Siidlich erreichen
etliche Formen Brasilien und Paraguay einerseits, Bolivien andererseits.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Sectio |. PSILOCRASPEDA
3S ohne Haarbiirste auf der blanken Hinterrandsfliche des Hinterfliigels.
1. Eryphanis polyxena \leerburgh.
a. Eryphanis polyxena polyxena Meerburgh.
Papilio polyxena, Meerburgh, Afbeeld. Zeldzaame Gewassen, t. 41 (1775).
Eryphanis polyxena, Kirby, Cat. diurn. Lep. App. p. 646 (1871).
Papilio automedon, Cramer, Pap. Exot. Vol. 1, p. 65, t. 41, f. A-B (fig. typ. &) (1779).
Papilio automedon, Stoll, in Cramer, Pap. Exot. Vol. 4, p. 204, t. 389, f. A-B (1782).
Morpho (Pavonia) automedon, Godart (Latreilleu.),in Enc. Meth. Zool. Vol. 9, p. 447, n° 23 (u. Suppl. p. 807) (1819).
Pavonia autumedon, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Vol. 1, p. 118 (1844).
Caligo automedon, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 14 (1851).
Eryphanis automedon, Boisduval, Lép. Guatém. p. 57 (1870).
Eryphanis automedon, Kirby, Cat. diurn. Lep. App. p. 646 (187:).
Eryphanis automedon, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1. 217 (1887).
Eryphanis automedon, Kaye, in Ent. Rec. Vol. 11, p. 57 (1899).
Moera automedena, Hiibner, Verz. Schmett. p. 51 (1816).
Guayana, Venezuela, Trinidad.
b. Eryphanis polyxena amphimedon Felder.
Pavonia amphimedon, C. u. R. Felder, in Reise Novara Lep. Vol. 2, (2) p. 454, n° 750 (1865).
Caligo automedon var. amphimedon, Kirby, Cat. diurn. Lep, p. 129, n° 19 (1871).
32 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Eryphanis automedon var. amphimedon, Kirby, Cat. diurn. Lep., App. p. 246 (1871).
Eryphanis amphimedon, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1887).
Eryphanis wardii, Boisduval, Lép. Guatem. p. 58 (1870) (1).
Eryphanis polyxena, Weymer, in Reiss u, Stiibel, Reisen Siid-Amer. Lep. p. 90, n° 10 (1890).
Eryphanis automedon, von B6nninghausen, in Ver. Nat. Verh. Hamb. Vol. 9, p. 38 (1896).
Siid-Brasilien, Paraguay.
c. Eryphanis polyxena tristis Staudinger.
Eryphanis automedon var. tristis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217, t. 76 (als Eryphanis
automedoi) (1887).
Peru.
d. Eryphanis polyxena lycomedon Felder.
Pavonia lycomedon, C. u. R. Felder,in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 423, n° 134 (1862).
Pavonia lycomedon, Felder, in Reise Novara Lep. Vol. 2 (2), p. 454, n° 751, t. 65, f. 3 (fig. typ.) (1865)
Caligo automedon var. lycomedon, Felder, eodem, Append. p. 646 (1871).
Eryphanis lycomedon, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1887).
Eryphanis lycomedon, Therese, Prinzessin v. Bayern, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 47, p. 265, n° 106 (1902).
Pavonia automedon, Bates, in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 249 (1863).
Caligo automedon Butler u. Druce, in Proc, Zool. Soc. Lond. p. 339 (1874).
Eryphanis automedon, Godman u. Salvin, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 122, n° 56 (1880).
Eryphanis wardii, Godman u., Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 137, t. 13, f. 1-2 (1881).
Central-America, Columbien,
e. Eryphanis polyxena novicia Stichel, nov. subsp. (1).
Ecuador.
Sectio Il. TRICOTHAMNODES
ot mit biirstenartigem Haarbiischel nachst der Submediana des Hinterfliigels.
2. Eryphanis aesacus Herrich-Schaffer.
a. Eryphanis aesacus aesacus Herrich-Schiaffer.
Caligo aesacus, Herrich-Schaffer, Exot. Schmett. p. 55, f. 3-4 (fig. typ.) (1850).
Eryphane aesacus, Boisduval, Lép. Guatém. p. 58 (1870).
Eryphanis aesacus, Kirby, Cat. diurn. Lep. App. p. 646, n° 6 (1871).
Eryphanis aesacus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217, t. 76 (1887).
Mexico, Guatemala, Nicaragua.
b. Eryphanis aesacus buboculus Butler.
Caligo bubocula, Butler, in Cist. Ent. Vol. 1, p. 74 (1872).
Eryphanis bubocula, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1881).
Eryphanis bubocula, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 138,t.15,f. 1-3 (fig. typ.) (1881).
Costa-Rica, Panama (Chiriqui).
3. Eryphanis gerhardi Weeks.
Caligo gerhardi, Weeks, in Proc. New Engl. Zool. Club, Vol. 3, p. 3 (1903).
Bolivien.
(1) Axaphanis wardit Boisduval ist, wie durch Vergleich der Typen des Dr. B. (in coll. Charles Oberthiir, Rennes) festgestellt, identisch
mit amphimedon Felder. Boisduvals Vaterlandsangabe : Guatemala und Nicaragua beruht aller Wahrscheinlichkeit nach auf Irrtum und diirfte eine
Verwechselung mit Stiicken aus Mato-Grosso vorliegen, ein zutreffender Fundort, den B. in Lép. Guatém. bei der Beschreibung der Form nachrichtlich
angibt. (conf. Ins. Bérse Vol. 21, p. 197, 1904.)
(2) Eryvphanis polyxena novicia. GS Minor specie typica et subspecie Zycumedorz Felder. Supra omnino colore spadicea, media parte alarum
anticarum parum violaceo-tincta, fascia submarginali sinuata ochracea satis distincta; alis posticis manifeste angulatis, fascia dilute-ochracea marginali.
Long. al. ant. 56mm.
Etwas kleiner als die verwandten Formen, namentlich auch als Zycomedon Felder. Oberseite dunkelbraun, Vorderfliigel im medianen Teile mit
dunkel-violettem Anfluge, aber ohne Schiller. Submarginalbinde sehr deutlich und viel scharfer als bei der genannten Form. Hinterfligel auffallend
deutlich an der mittleren Mediana geeckt, fast zahnartig, und schmal aber ziemlich schart ockergelb besiumt. Typus in coll. Ch. Oberthir, Rennes :
Ecuador, La China, Prov. Los Rios.
FAM. NYMPHALIDA® 33
4. Eryphanis reevesii \\Vestwood (Doubleday M. S.).
2. Eryphanis reevesii reevesii \Vestwood.
Opsiphanes reev.
esi?é, Westwood (u. Hewitson), (Doubleday M.S.) in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen.
diurn. Lep. t. 57, f. 5, (fig. typ. 2) (1849).
Cali: esi
7
i, Westwood, eodem, Vol. 2, p. 342, n° 15 (1851).
Chenu u. Lucas, Encycl.. Papill. p. 168, f. 279 (1856).
‘, Kirby, Cat. diurn. Lep. App. p. 646 (1871).
2, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1887):
tvoa, Butler, in Cist. Ent. Vol. 1, p. 3 (1869) (©).
troa, Butler, Lep. Exot. Vol. 1, p. 20, t. 11, f. 2 (fig. typ. 6) (1870).
ya, Kirby, Cat. diurn. Lep. App. p. 646 (1871).
oz 2, Boisduval, Lép. Guatém, (1870).
don 2, Kirby, Cat. diurn. Lep. App. p. 646 (1871).
i, W. Miller, in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 598 (1886).
Siid-Brasilien,.
5. Eryphanis reevesii pusillus Stichel. — Taf. 3, Fig. 6.
Eryphanis
reevesii pusillus, Stichel, in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 389, n° 3 (1903) (1).
Paraguay.
on
. Eryphanis seleucida Hewitson.
Pavonia séleucida, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 5, Pavonia, t. 1 (1876).
Bolivien.
6. Eryphanis zolvizora Hewitson.
a. Eryphanis zolvizora zolvizora Hewitson.
Pavonia izo a, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 5, Pavonia, t. 2 (1876).
Caligo zolvizovra, Weymer, in Reiss u. Stiibel, Reisen Siid-Amer. Lep. p. 62, n° 38 (1890).
3olivien, Ecuador.
+, Eryphanis zolvizora opimus Staudinger.
Eryphanis opimus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1887).
Sryphanis opimus, Therese, Prinzessin v. Bayern, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 47, p. 265, n° 107 (1902).
Columbien, Peru.
il. GENUS CALIGO, HUBNER
Caligo. Hiibner, Verz. Schmett. p. 51 (1816); Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen.
diurn. Lep. p. 340 (part.) (1851); Ménétries, Cat. Acad. Imp. St. Pétersb. Lep. Vol. 2, p. 38
(1857); Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 167 (part.) (1858); Hlerrich-Schiffer, in Corr. Bl. Ver.
Regensb. Vol. 18, p. 55 (1864); Herrich-Schiffer, eodem, Vol. 19, p. 65 (part.) (1865); Butler,
Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 39 (1869); Kirby. Cat. diurn. Lep. p. 127 (part.) (1871); Scudder, in
Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. to, p. 129, n° 185 (1875); F. Miiller, in Ent. Zeit. Stett. Vol. 39,
p- 296 (1878); Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 130 (1881); Schatz
(Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 193 (1889); Michael, in Deutsche Ent. Zeit. Lep.
Vol. 7, p. 202 (1894); Reuter, in Acta Soc. Sc. Fenn. Vol. 22, p. 113 (1896); Kirby, in Htibner
u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 52 (1901).
Potamis. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 77, f. 1-2 (spec. P. conspicua teucer fiir dllioneus) (1806-16).
Morpho. Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 435(part.) (1819); Lucas, Hist. Nat. Lép.
Exot. p. 138 (part.) (spec. M. inachis fiir beltrao) (1835); Kollar, in Denkschr. Akad., Wiss. Wien.
Vol. 1, p. 354 (part.) (1849).
G) Eryphanis reevesii pusillus. Multo minor specie typ., alis posticis subangulatis, anticis colore cyaneo magis extenso.
Kleiner als Lryphanis reevesié (typ.), die blaue Bestiubung auf dem Vorderfliigel breiter, namentiich nach hinten, und niher an den Apex
ausgedehnt. Saum des Vorderfligels dunkler, grauschwarz, nur die Cilien heller. Hinterfliigel ebenfalls mehr blau, bis auf den schmalen, etwas
aaigeleliten Sanam; an der mittleren Mediana stumpfer geeckt, die Ecke weniger vorspringend, auch der Apex des Vorderfliigels weniger spitz. Typus in
col. Stichel.
34 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Pavonia. Godart (Latreille u.), in Enc. Méth. Zool. Vol. 9, Suppl. p. 807 (part.) (1819); Duncan, in
Natural Library, Ent. Vol. 5, p. 178 (1837); Doubleday, List Ins. Brit. Mus. p. 117 (1844);
Boisduval, Lép. Guatém. p. 55 (part.) (1870); Burmeister, in Rev. Zool. (3), Vol. 1, p. 31
(Caligo +- Opsiphanes) (1873).
Erodes, Billberg (Dalman M. S.). Enum. Insect. p. 79 (spec. sol. A. idomeneus) (1820) ; Scudder, in
Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 104, n° 27 (1875).
Atlgemeine Charaktere. — Kopf verhiltnismissig klein, Augen elliptisch gewolbt, nackt oder
behaart. Palpen dicht anliegend behaart, dorsal mit einem schopfartigen Biischel. Am kurzen Basal-
glied die Behaarung straff abstehend. Mittelglied bedeutend linger, aufwarts gerichtet, Endglied kurz,
glatt, zugespitzt, tiber den Kopf merklich hervorragend. Antennen diinn, distal allma&hlich ein wenig
verdickt, unter halber Lange des Vorderfliigels. Thorax lang und schlicht behaart, Abdomen klein, beim &
seitlich mit Reibewiilsten. Vorderfliigel etwa rechtwinklig dreieckig. Vorderrand leicht gekriimmt, Apex
abgerundet, Aussenrand fast gerade, etwas wellig, Analwinkel abgerundet rechteckig, Hinterrand leicht
geschweift. Subcostalis fiinfastig. Subcostalis 1 und 2 unweit von einander in kurzer Entfernung vor
dem Zellende, Subcostalis 3 betrachtlich hinter demselben entspringend, in den Vorderrand auslaufend.
Unweit von Subcostalis 3 zweigt Subcostalis 4 ab, lauft in den Apex und bildet mit Subcostalis 5 eine
miassig lange Gabel. Der letzte Ast miindet bald hinter dem Apex in den Aussenrand. Zelle breit und lang,
in der Mittellinie gemessen unter halber Fliigellange, hinten bedeutend, bis auf etwa 2/3 letzterer,
vorspringend. V D C schrag nach aussen gerichtet, M D C mindestens doppelt so lang wie diese, anfangs
scharf rechtwinklig nach hinten gestellt, dann in hakenférmigem Bogen nach aussen laufend. H D C
etwa von der Linge der V D C, quergestellt, etwas nach aussen gekriimmt, mit V M etwa einen
rechten Winkel bildend. S M stark geschweift; H M von M M etwa in gleichem Abstand wie M M
von V M oder nur wenig weiter entfernt, alle drei annahernd parallel verlaufend. G auf der Unterseite
in der Nahe der Basis vor S M mit einem mehlartig bestiubten Duftfleck. Hinterfliigel nahezu elliptisch,
Vorderrand flach, Apex rundlich, Aussenrand mehr oder weniger gewellt, Analwinkel abgerundet,
Hinterrand mit breitem, den Leib umschliessenden Lappen. Praecostalis einfach, leicht wurzelwarts
gekriimmt. Praecostalzelle klein, etwa elliptisch, proximal zugespitzt. Zelle ahnlich derjenigen des
Vorderfliigels, tiber halber Linge des Fliigels, V DC gerade, etwa halb so lang wie M D C; diese
proximal hakenférmig gekriimmt, darauf gerade, H DC kiirzer, quergestellt, rechtwinklig zur vorigen
und zur Mediana. Nachst dem Hinterrand, an der dem Hinterleib anliegenden Stelle eine blanke
Reibeflache mit oder ohne Haarpinsel naéchst der Submediana. Vorn, in der proximalen Zone, vor der
Subcostalis meist ein mehr oder weniger deutlicher mehliger Duftfleck.
Schema des Fliigelgeiders. — Taf. 2, Fig. 4.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Vertreter dieser Gattung wohnen in Central-
und Siidamerica. Die meisten leben im tropischen Giirtel, ndrdlich dringen einige Formen bis Mexico,
siidlich bis Paraguay und Argentinien einerseits und Bolivien andererseits vor.
FAM. NYMPHALIDZ 35
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Sectio 1. GRAPHIOPHORI.
Hinterfliigel des oh an der Submediana mit kleinem Haarpinsel auf blanker
Reibeflache der Membran.
Hinterfliigel ohne gelbe oder gelbliche Binde oder Fleckenbinde.
Cohors |. TEUCRIFORMES.
Augen nicht behaart.
1. Caligo teucer Linné.
a, Caligo teucer teucer Linné.
Merian, Ins. Surinam, t. 23 p. (1705).
Seba, Thesaurus, Vol. 4, t. 31, f. 3, 4 (1765).
Papilio teucer, Linné, Syst. Nat. (10), p. 464, n° 33 (1758).
Papilio teucer, Linné, Mus. Lud. Ulr., p. 212 (1764).
Papilio teucer, Cramer, Pap. Exot. p. 80, t. 51, f. A B (fig. typ.) (1779)
Morpho (Pavonia) teucer, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 448, n° 26 (Suppl. p. 807) (1819).
Pavonia teucer, Duncan, in Natural Library, Ent. Vol. 5, p. 179, t. 22, f. 2 (1837).
Caligo teucer, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 6 (1851).
Calico teucer, Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 168, t. 35, f. 2 (1858).
Calico teucer, Aurivillius in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 32 (1882).
Calico teucer, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 216 (1887).
(2) Caligo teucra, Hubner, Verz. Schmett. p. 51, n° 482 (1816).
7
Guayana, Brasilien, Columbien (?).
6. Caligo teucer obidonus Fruhstorfer.
Caligo teucer obidonus, Fruhstorfer, in Soc. Ent. Vol. 28, p. 145 (1904) u. Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16
p- 313 (1904).
Unt. Amazonas, Obidos.
c. Caligo teucer iapetus Stichel. — Taf. 5, Fig. |.
Caligo teucer japetus, Stichel, in Ins. Borse Vol. 20, p. 389, n° 4 (1903) (I).
Paraguay.
d. Caligo teucer insulanus Stichel.
Caligo teucer insulanus, Stichel, in Ins. Borse, Vol. 21, p. 21, n° 25 (1904) (2).
Caligo eurylochus, var. minor, Kaye, in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 165 n® 16 (1904).
Trinidad.
(1) Caligo teucer iapetus. — Differt a forma typica alis anticis area posteriore magis dilutiusque caerulescenti-tinctis, area costali brunnescent
latiore, fascia angusta transversa magis discreta, pallido-ochracea ; alarum posticarum area cyanea basali magis extensa, limbo externo latiore albido.
Grosse und Habitus wie C. fencer typ. Blaufirbung des Vorderfligels intensiver und weiter nach vorn ausgedehnt. Sie bildet ein spitzwinkliges
Dreieck, welches in einem schmalen Streifen bis in die Zelle zieht, andererseits im mittleren und hinteren Teile an den breiten, braunschwarzen Saum
stosst. Der Gipfel der Zeichnung liegt am Ursprung der M M. Farbe ein leicht graues Himmelblau, in schrager Beleuchtung leicht irisierend. Briun-
liche Costalzone etwas verbreitert und die hellere submarginale Binde deutlicher und intensiver gelblich. Hinterfliigel mit etwas breiterem, intensiver
gefarbten weisslichen Saum, das Blau des Basalfeldes bis zum Zellende und nahe zum Analwinkel verbreitert, im mittleren Teile schon violettblau irisierend.
Unterseite ohne wesentliche Verschiedenheiten gegen die Stammform, es fehlt indes der bei jener in der Regel yorhandene hintere Augenfleck des Vorder-
flagels. O grosser, das graublaue Medianfeld des Vorderfliigels in der Zelle weiter ausgeflossen und allmahlich in die briunliche Costalzone ibergehend.
Blaues Basalfeld des Hinterfliigels triiber, bis hinter das Zellende reichend und gegen die breit schwarzbraune Aussenrandzone bestimmter begrenzt.
Farbung im allgemeinen matter. Erinnert ungemein an C. 7///omeuws Q,von dem es sich durch etwzs schlankere Vorderfliigel, breitere, die hintere Zellecke
ausfallende fablgelbe Median- Querbinde, weniger intensive Submarginalbinde und die Farbe der blauen Bestaubung, die hier fahl- himmel- bis graublau,
bei jenem schwach violett schillernd ist, unterscheidet. Typen i. Coll. Stichel.
(2) Caligo teucer insulanus.—G A TeucroLinnaei haec subspecies differt alarum anticarum area costalinon fusca,sed incerte caesia,fascia ultra-
cellalari transversali albida satis angusta,area discali et posteriore copiose cacrulescentibus,area externa non fusca sed nigrescente.Alarum ] osticarum area
basali caesia, caeruleo-micante, usque ad finem cellulae pertinente, parte ulteriore nigrescente.— 9 Major, alarum anticarum fasciis duabus albidis distinc-
tioribus transversalibus, una ultracellulari recta, abbreviata, altera submarginali, acutangula, paulo nubiliore. Forma geographica insularis habitu facieque
C. teucri suzannae Deyrollei, sed generaliter pallidior.
o Vorderfligel in der Costalgegend nicht briunlich wie bei tevceyr L.sondern ungewiss graublau, die mediane weissliche Querbinde sebr schmal,
mittleres und hinteres Fliigelfeld reichlich blauschimmernd, Aussenrandzone schwirzlich. nicht braun. Hinterfliigel an der Basis graublau, irisierend bis
zom Ende der Zelle, Aussenteil schwarzlich. 9 grosser, Vorderfliigel mit zwei deutlicher vortretenden weisslichen Submarginal-Binden, von denen die
proximal liegende gerade liuft und verkiirzt ist, die andere wellenformig und etwas obsoleter auftritt. Diese geographische Inselform hat beinahe das
Ansehen von C. teucer suzanna Deyrtolle, ist aber im allgemeinen bleicher. Typeni. coll. mus. Tring (Sir Walter Rothschild).
36 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
e. Caiigo teucer suzanna Deyrolle.
Pavenia suzanna, Deyrolle, in Rev. Zool, (3), Vol. 21, p. 275, t. 24, 26 (1872).
Caligo suzanna, Kirby, Cat. diurn. Lep. Suppl. p, 717, n® 26 (1877).
Caligo suzanna, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1887).
Venezuela, Columbien, Peru, Oberer Amazonas (in Uebergiingen zur Stammform).
2. Caligo illioneus Cramer.
a. Caligo illioneus illioneus Cramer.
Papilio illioneus, Cramer, Pap. Exot. Vol. 1, p. 81, t. 52, f, A, B (fig. typ. 2) (1779).
Morpho (Pavonia) slioneus, Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool.Vol.9, p. 448, n° 25 u. Suppl. p.807 (18190).
Caligo ilianeus, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 5 (1851).
Pavonia ilioneus, Burmeister, in Rev. Zool. (3), Vol. 1, p. 39, t. 5, f. 2, 3 (Biol.) (1873).
Caligo ilioneus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 216, t. 73 (als C. tewcer) (part.) (1887).
Potamis conspicua teucer, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 77 (fig. typ. G) (1806-16).
Caligo illionea, Hiibner, Verz. Schmett. p. 51 no 485 (1816),
Caligo oberon, Kirby, in Htibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. Vol. 1, p. 52, S (part.) (1901).
Guayana, Nordl. Brasilien.
b. Caligo illioneus oberon Butler,
Caligo obcron, Butler, in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 488 (1870).
Caligo oberor;, Brunner von Wattenwyl, Farbenpr. Ins. p. 6, t. 4, f. 52 (1897).
Columbien, Ecuador, Peru, Central-America (?),
c. Caligo ijlioneus pampeiro Fruhstorfer,
Caligo illioncus pampeivo, Fruhstorfer, in Soc, Ent. Vol. 28, p. 145 (1904), u. Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16,
p- 312 (1904),
Paraguay.
d. Caligo illioneus polyxenus Stichel.
Caligo illioneus polyxenus, Stichel (Maassen i. ].), in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 389, n° 5 (1903) (1).
Caligo saltus, Kaye, in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 165, n° 15, t. 17, f. 1-1 f. (biol.) (1904).
Venezuela, Trinidad.
3. Caligo prometheus Kollar.
a. Caligo prometheus prometheus Kollar.
Morpho prometheus, Kollar, in Denkschr. Akad. Wiss. Wien, p. 357, n° 16, t. 43, f. 3, 4 (Sep. p. 7, t. 2, f. 3, 4)
(fig. typ.) (1849).
Caligo prometheus, Herrich-Schaffer, in Corr. Blatt Ver. Regensb. Vol. 19, p. 65 (1865).
Caligo prometheus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 216 (1887).
Caligo haenschi, Rober, in Soc, Ent. Vol. 18, p. 146 (1904) (conf. Fruhstorfer, in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16,
p. 318, 1904).
Columbien, Nicaragua (?).
b. Caligo prometheus epimetheus Felder.
Pavonia epimetheus, C. u. R. Felder (u. Rogenhofer), in Reise Novara Lep. Vol. 2 !2', p. 455, n° 755 (1865).
Caligo epimetheus, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 128, n° 12 (1871).
Caligo phorbas, Rober, in Soc, Ent. Vol. 18, p. 146 (1904), (conf. Fruhstorfer, in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16,
p. 318, 1904).
Columbien, Ecuador.
4. Caligo memnon Felder.
a. Caligo memnon memnon Felder.
Pavonia memnon, C. u. R. Felder (u. Rogenhofer), in Reise Novara Lep, Vol. 2 (2), p. 454, n° 753 (1865).
Caligo memnon, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 128, n° 8 (1871).
Caligo memnonx, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 133, t. 14, f. 1, 4 (1881).
Caligo mennon, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 216 (1887).
Pavonia dardanus, Boisduval, Lép. Guatém. p. 56, 2 (1870).
Mexico bis Panama.
(1) Caligo tdlioneus polyxenus. — Alarum anticarum fascia transversa submarginali valde acutangula et crenata dilfeit a forma typica.
Eine Form von ///éonews, welche sehr intensiv gezeichnet ist. Die helle Medianbinde von grell ockergelber Farbe, scharf begrenzt, von der
Costa bis iiber den hinteren Medianast ziehend, dort etwas verwaschen. Submarginalbinde von gleicher Farbe. aus Spitzbogen oder spitzen Zacken in den
Aderzwischenriiumen zusimmengesetzt, die einzelnen Bogen, namentlich aie vorderen, mehr oder weniger in proximaler Richtung an den Adern ausge-
flossen, wodurch liirgliche Leile der Grundfarbe fleckartig isoliert werden. — Typen i. coll. Mus. Berolin. und i. coll. Stichel.
FAM. NYMPHALIDZ Shy
6. Galigo memnon menes Fruhstorfer.
Caligo memnon menes, Fruhstorfer, in Ins. Borse, Vol. 20, p. 413 (menus ex err.) (1903) u. in Deutsche Ent. Zeit.
Iris, Vol. 16, p.317 (1904).
Caligo pavo, Rober, in Soc. Ent. Vol. 28, p. 145 (1904).
Caligo telamonius ah. livoris, Bang-Haas (Staudinger ?), i. 1.
Columbien, Chiriqui.
c. Galigo memnon peleus Stichel, nov. subsp. (1).
Venezuela.
d. Caligo memnon telamonius Felder.
Pavonia telamonius, C.u. R. Felder, in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 422 (1862); C.u. R. Felder, in Reise Novara Lep
Vol. 2 (2), p. 454, n° 754, t. 64, f. 1 (fig. typ.) (1865).
Caligo telamonius, Herrich-Schaffer, Corresp. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 65 (1865).
Caligo telamonius, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 134, t. 14, f. 1 u. 2 (forma trans
ad C. memmon menes, Fruhst.) (1881).
Caligo telamonius, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 216 (1887).
Columbien. Venezuela
5. Caligo bellerophon Stichel. — Taf. 5, Fig. 2.
Caligo bellerophon, Stichel (Maassen M. S.}, in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 389 (1903) (2).
Ecuador.
6. Caligo eurilochus Cramer.
a. Caligo eurilochus eurilochus Cramer.
Papilio eurilochus, Cramer, Pap. Exot. Vol. 1, p. 53-54, t. 33, f. A, t. 34, f. A (fig. typ.) (1775).
Papilio eurilochus, Gdze, Ent. Beitr. Vol. 3(2), p. 79, n° 37 (1779).
Papilio eurylochus, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 3, p. 67, n° 71, t. 29, f. 1, 2 (1788).
Morpho (Pavonia) eurylochus, Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 448, n° 24, (Suppl. p. 807)
(1819).
Caligo eurylochus, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n® 4 (1851).
Pavonia eurylochus, Burmeister, Rev. Zool. Ser. 3, Vol. 1, p. 36, t. 4 (Biol.) (1873).
Papilio teucer, Gmelin, in Linné, Syst. Nat. (13) Vol. 1 (V), p. 248, n° 44 (1788-93).
Caligo euriloche, Hiibner, Verz. Schmett, p. 51, n° 484 (1816).
Guayana, Nordl. Brasilien.
6, Caligo eurilochus livius Staudinger.
Caligo livius, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett, Vol. 1, p. 215, t. 74 (1887).
Caligo curilochus pallidus, Fruhstorfer, in Ins. Borse, Vol. 21, p. 125 (1904).
Ober.-Amazonas, Peru, Bolivien.
(1) Caligo memnon peleus. — Alis anticis pallido-ochraceis, fere ochroleuceis, area basali et costali fuscis, signaturis irregularibus partis
inferioris translucentibus, fascia ultracellulari transversa concolori pertinente usque ad costam, area exteriore nigrescente, margine pallidiore, area intus
sinuata, fascia transversa obscura indistincta; alis posticis rotundatis, margine vix undulato, nigris, ad basin in cellula et in parte posteriore caeruleo-
micantibus, margine anguste albido. — Eine Subspecies, welche sich durch bleichere Firbung, geringere Ausdehnung des Blauschillers auf dem Hinter-
flagel und den sehr wenig gewellten Saum desselben von der nichst verwandten Form ¢c/amonzus unterscheidet. Der Saum aller Fliigel ist intensiver
schwarz gefarbt, an der Basis des Vorderfliigels ist ein geringer graublauer Schimmer wahrnehmbar. Vorderfliigelliange 70 mm. Typus (G) i. coll.
Ch. Oberthir. Venezuela (Merida).
(2) Caligo bellerophon. Alis supra pallide brunneis, anticis fascia ultracellulari angusta dilutiore, limbo externo fusco, fascia valde indistincta
submarginali, maculis duabus atris subapicalibus albonotatis; posticarum dimidio externo nigricante; subtus omnibus candidis, obscuro-striatis, reticulatis
et variegatis, anticis fascia ultracellulari angusta albida crenata strigisque duabus submarginalibus nigricantibus, ocellis binis, inferiore minore,
coeco; posticis in disco brunneo-tinctis, maculisque duabus pone venam costalem et inter venas radiales sitis, albo-notatis, ocelloque inferiore magno,
atro, flavoc ncto.— C_ar/she Huebneri similis, sed absentia tincturae cyaneae supra praesentiaque maculae mediae alarum posticarum subtus optime differt.
G Oberseite hell ockergelb, Vorderfliigel mit etwas dunklerer Costalzone, Saum derselben breit dunkelbraun bis nahe zur Zelle, dort
durch eine ungewisse hellere Binde im Tone der Grundfarbe unscharf abgegrenzt. Im helleren Saum eine ungewisse, verwaschene briunliche,
wellenformige Submarginalbinde. Der helle Fliigelteil, von unten durchscheinend, ungewiss gestrichelt, gewolkt und berieselt, im Apex zwei dunklere,
proximal weiss betupfte Flekchen, Hinterfiiigel mit breiter, bis in die Zelle reichender schwarzbrauner Randzone, die Farbung geht allmahlich in den
lebmgelben Basalteil aber. Vorn ist letzterer blasser und glinzt seidenartig. Zwischen Costalis und Subcostalis, nahe der Praecostalzelle ein schwarzer
Mehlfleck. Saum schmal weisslich. Unterseite den verwandten Formen sehr ahnlich, indes die dunklere Strichelung des Vorderfliigels reichlicher
verteilt, so namentlich auch derschsale helle, gebogte Transversalstreif in der medianen Zone iiber und iiber berieselt. Die Wellenlinienam Saume hinter
dem Subapicalauge stark eingeriickt, hinter der MM in der Regel ein blinder Augenfleck. Hinterfliigel reichlich weiss, in der dusseren Hilfte mit
zwei durch dichtere Strichelung entstandenen, deutlich markierten submarginalen Wellenlinien. — Q grdésser, submarginale Wellenbinde des Vorder-
flagels deutlicher. der proximal anliegende Streif des Saumteiles stark aufgehellt und ebenfalls als ockergelbe Mondflecken-Binde markiert.
Dunkle Randzone des Hinterfliigels schmiler, am Saume reichlicher weiss. — Aehnlich C. teJamonius und arisbe aber ohne Spur blauer oder
schiefriger Farbung des Hinterfliigels und die dunklen Teile in mehr braunem als schwarzem Farbton gehalten. Vorderfliigellinge : o 64-65,
© 74 mm. Typen in coll. Mus. Berolin. und in coll. Stichel.
38 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Caligo eurilochus andicolens Stichel.
Caligo eurilochus andicolens, Stichel (Felder M.S.), in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 389, n° 6 (1903) (1).
Caligo livius, Staudinger, partim.
©
Central-Columbien.
d. Caligo eurilochus caesia Stichel.
Caligo eurilochus caesius, Stichel, in Ins. Borse, Vol. 20, p. 389, n° 8 (1903) (2).
Venezuela.
Caligo eurilochus sulanus Fruhstorfer.
Caligo eurilochus sulanus, Fruhstorter, in Soc. Ent. Vol. 18, p. 145 und in D. Ent. Zeit. Iris, Vol. 16, p. 315 (1904).
Caligo eurylochus, Godman u. Salvin, in Biol. Centr.-Amer, Lep. Rhop. Vol. 1, p. 130 (part.) (1881).
&
Central-America (Honduras, Chiriqui).
. Caligo eurilochus brasiliensis Felder.
Pavonia eurylochus var, brasiliensis, C. u. R. Felder, in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 12, p. 476, n° 55 (1862).
Pavonia eurylochus var. brasiliensis, Deyrolle, in Rev. Zool. (2), Vol. 23, p 19 (1872).
Caligo eurylochus, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 127, n° 4 (1871).
Caligo eurylochus, Burmeister, Descr. phys. Rép. Argent. Vol. 5, T. 2, p. 20, t.. 16 (Biol.) (1879).
Caligo eurylochus, W. Miller, in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 597 (Biol.) (1886).
Caligo eurylochus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 215 (part.) (1887).
Caligo eurylochus, von Sommerfeld, in Ins. Boérse, Vol. 13, p. 56 (1896).
Caligo eurylochus, von Bonninghausen, in Verh. Nat. Ver. Hamburg. Vol. 9, p. 37 (1896).
oe
Central- und Siid-Brasilien.
g. Caligo eurilochus galba Deyrolle.
Pavonia galba, Deyrolle, in Rev. Zool. Ser. 3, Vol. 2, t. 6, 7 (1874).
(
Nordl. Columbien.
h. Caligo eurilochus morpheus Stichel.
Caligo exrilochus morpheus, Stichel, in Ins, Borse. Vol. 20, p. 389, n° 7 (1903) (3).
Columbien, Ecuador, Peru.
7. Caligo idomeneus Linné.
a. Caligo idomeneus idomeneus Linné.
Merian, Ins. Surinam, t. 60 (1705).
Seba, Thesaurus, Vol. 4, t. 24, f. 7-8 (1765).
(1) Caligo enrilochus andicolens. Caligo exrilocho typ. et livio similis, sed major, alis anticis pallidioribus, sublividis, parte inferiore alisque
posticis ad basin leniter caerulescentibus.
Grosse, auffillige Rasse der typischen Form, Vorderfliigel heller, fahl rauchgelb, Saum nur wenig dunkler, in der Medianzone ein schmaler
transversaler, ausserhalb der Zelle liegender Streifen mit ungewisser Begrenzung heller abgetont. Alle Zeichnung der Unterseite als schwirzliche
Berieselung deutlicher durchgeschlagen, nur der Saum einténig. Das Graublau im Basal-Hinterrandsfeld nur ganz schwach angedeutet. Hinterfligel
mit ebenfalls reducierter blaugrauer Basalbestiiubung. Unterseite wie die der typ. Form, nur die Sperberzeichnung noch harmonischer und einténiger.
Vorderfligel-Liinge 85 mm. Typus in Mus. Tring (Sir W. Rothschild).
(2) Cadigo eurilochus caesia. Differt a forma typica alis anticis usque ad aream externam obscuram et ad costalem valde angustam dilute
caerulescentibus.
Vorderfliigel bis auf den ziemlich intensiv schwarzen Aussenrandteil und einen ganz schmalen grauen Costalstreifen hell blaugrau iiber-
flogen. Das dunkle Saumfeld, in dem aber doch noch die Sperberzeichnung der Unterseite matt durchschlagt, nur im vorderen Teil mit einer ungewissen
helleren Querbinde, indes der Saum selbst schmal, mit ziemlich deutlicher Begrenzung, bandartig grau aufgehellt. Graublaue, wenig irisierende Basal-
bestiiubung des Hinterfliigels bis iiber das Zellende und nahe zum Analwinkel ausgedehnt. Unterseite sehr intensiv gesperbert. Um die grosse Ocelle
des Hinterfliigels ein tief dunkelbrauner Hof, der sich vorn als schmaler, etwas weniger intensiv gefarbter Steg bis zur vorderen, in derselben Farbe
umringten Ocelle fortsetzt. Diese Zeichnung gleicht etwa derjenigen von Caligo exrilochus brasiliensis, die Berieselung (Sperberzeichnung) im ganzen
Saumfelde ist aber feiner und der Grundton ein bliuliches Weisgrau. Vorderfliigel Linge 79 mm. Typus in coll. Thieme. Berlin.
(3) Catigo eurilochus morpheus. — Differt a forma typ. alis supra et subtus multo obscurius tinctis, supra fere lividis, area externa fere nigra.
Forma extrema et obscura in habitu C. ew72. galéae Deyrollei sed amplius obscurior.
Nichst Caligo exrilochus ga/ba, aber noch diisterer und einténiger. Ton der Grundfarbe im Basal- und Medianfelde des Vorderfliigels
dunkler blaugrau, nur ein Costalstreif und ein transversaler, ungewiss begrenzter Streifen nichst dem intensiv schwarzen Aussenrandfelde heller
schwarzgrau, letzterer Streifen manchmal ganz leicht gelblich angeflogen. Submarginalbinde vorn ganz schwach angedeutet, Saum selbst leicht aufge-
hellt. Hinterfliigel im Aussenfelde bis uber den Zellschluss intensiv schwarz, dann allmahlichin Blaugrau ibergehend. Sperberzeichnung der Unterseite
hier wie auf dem Vorderfliigel nur in dem etwas helleren mittleren Uebergangsfelde deutlicher durchschlagend. Unterseite grob gleichmissig berieselt,
die hintere grosse Ocelle nur vorn braun angelegt, Sperberung im Analwinkel mehr oder weniger reduziert, dieses Fligelfeld zuweilen fast weiss,
schwach brdunlich berieselt. Vordem Saume eine, durch Verdichtung der Strichelung, die hier schwarz wird, entstandene, ziemlich deutliche Wellenbinde,
die distal von einem lichteren, weniger gestrichelten Randstreif begrenzt wird. Vorderfliigel-Lange G 78-80 mm. Typen in Mus. Tring (Sir Walter
Rothschild). — Vielleicht Regenzeitform ?
d
.
FAM. NYMPHALID&# 39
Papilio idomeneus, Linné, Syst. Nat. (10), Vol. 1, p. 464, n° 34 (1758).
fo idomeneus, Linné, Mus Lad. Ult. p. 213 (1764).
7 Clerck, Icones, t 20, f. 1 (fig. typ.) (1764).
Papilio idome Cramer, Pap. Exot. Vol. 1, p. 82, t. 52, f. B (1779).
Morpho(Pavoxia) idomeneus, Godart (Latreille u.), in Enc, Méth. Zool. Vol. 9, p. 449, n° 27 (Suppl. p. 807) (1819).
Alerodes idomeneus, Billberg, Enum. Insect. p. 79 (1820).
nia tdomeneus, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Vol. 1, p. 107 (1844).
s, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 1 (1851).
0 idomeneus, Aurivillius, in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 33 (1882).
o idomeneus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p 215 (1887).
o idomeneus, WWeymer, in Reiss u. Stiibel. Reisen Sitid-Amer. Lep. p. 43, n° 5 (1890).
Caligo tdomenea, Hubner, Verz. Schmett. p. 51, n° 48 (1816).
}
) édo MeEREUS,
idomes
Guayana, Nord-Brasilien, Columbien (?)
x. forma euphorbus Felder.
Pavonia euphorbus, C. u. R. Felder, in Wien, Ent. Mon. Vol. 6, p. 123, n° 142 (1862
Pavonia euphorbus, Deyrolle, in Rev. Zool. (3), Vol. 21, p. 64, t. 9, 11 (fig. typ. 6) (187
Caligo idomeneus forma euphorbus. Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 215 (1887).
Caligo euphorbus, Weymer, in Reiss u. Stiibel, Reisen Sitid-Amer. Lep. p. 33, no 10 (1890).
Papilio idomeneus, vay. Stoll, in Cramer, Pap. Exot. Vol. 4, p. 208, t. 390, f. A-B (fig. typ. 2) (1782).
Caligo menoetius, Staudinger, (u. Schatz), Exot. Schmett Vol. 1, p. 216 (1887).
Nord-Brasilien, Guayana, Columbien, Peru (neben der typischen Form).
. Caligo idomeneus rhoetus Staudinger.
Caligo idomeneus var. rhoetus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 215 (1887).
Siid- und Central-Brasilien (Amazonas).
#. forma nov. marsus Stichel (1).
Para, Amazonas.
c. Caligo idomeneus idomenides Fruhstorfer.
Caligo idomeneus idomenides, Fruhstorfer, in Ins. Borse, Vol. 20, p.413, u. Deutsch. Ent. Zeit. Iris, Vol. 16,
p- 316 (1904).
Bolivien, Peru.
. Caligo idomeneus superba Staudinger.
Caligo idomeneus var. superbus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 215 (1887).
Peru.
Caligo idomeneus agamemnon Weymer.
Calizo agamemnon, Weymer, in Reiss u. Stiibel, Reisen Siid-Amer. Lep. p. 111, t. 1, f. 3 und p. 62, n° 35 (1890).
Ecuador.
Cohors II. ARISBIFORMES
Augen behaart.
8. Caligo arisbe Hiibner. ;
Caligo arisbe, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 72, f. 1-2 (fig. typ.) (1816-24).
Caligo arishe, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2. p. 342, n° 9 (1851).
Caligo arishe, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1887).
Caligo arisbe, Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 53 (1901).
Morpho (Pavonia) taramela, Godart, in Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 450, n° 30 (Suppl. p. 807) (1819).
Caligo taramel.t, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 12 (1851).
Caligo taramela, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1887).
Siid-Brasilien.
y. Caligo oberthiirii Deyrolle.
Pavonia oberthurii, Deyrolle, in Rev. Zool. (3), Vol. 21, p. 20, t. 1 (fig. typ.) (1872).
Caligo oberthurii, Kirby, Cat. diurn, Lep. Suppl. p. 717, n® 25 (1877).
Caligo oberthurii, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217 (1887).
Columbien, Ecuador, Peru.
(x) Alis anticis satis caeruleo-virescentibus, posticis fere omnino caeruleo-micantibus; forma congruens efhorbo Felderi speciei typicae.
40 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
10. Caligo martia Godart.
Morpho martia, Godart (Latreille u.), in Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 450, n° 29 (1819).
Pavonia martia, Godart, eodem, Suppl. p. 807 (1823).
Caligo martia, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 2 (1851).
Caligo martia, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 217, t. 73 (fig. typ.) (1887).
Siid-Brasilien,
Cohors Ill. ATREIFORMES
Hinterfliigel mit gelblicher oder gelbey Sawmbinde oder submarginaler Flechenrethe.
11. Caligo atreus Kollar.
a. Caligo atreus atreus Kollar.
Morpho atreus, Kollar, in Denkschr. Akad. Wiss, Wien, Vol. 1, p. 356, n°15, t. 44,f. 1-2 (Separ. p. 6, t. 3, f. 1-2)
(fig. typ.) (1849).
Caligo atreus, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 128, n° 11 (1871).
Caligo atreus, Godman u. Salvin, Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 135 (part.) (1881).
Caligo atreus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 215, t. 75 (1887).
Caligo atreus, Edwards, in Ent. News. Vol. 2, p. 149, t. 7 (1891).
Columbien, Costa-Rica, Panama.
b, Caligo atreus ajax Westwood.
Pavonia ajax, Westwood (u. Hewitson) (Doubleday M S.), in Gen. diurn, Lep. t. 56, f. 2 (1849).
Caligo ajax, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 7 (1851).
? Pavonia ajax, Boisduval, Lép. Guatém. p. 57 (1870).
Caligo atreus, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 135 (part.) (1881).
Venezuela, Panama, Columbien.
c. Caligo atreus dentina Druce.
Caligo dentina, Druce, iu Trans. Ent. Soc. Lond. p. 155 (1874).
Caligo dentina, Staudinger, (atreus forma loci?) Exot. Schmett. Vol. 1, p. 215 (1887).
Ecuador, Columbien, Peru (?).
d. Caligo atreus agesilaus Druce.
Caligo agesilaus, Druce, in Ann. Nat. Hist. Ser. 7, Vol. 9, p. 321 (1902).
Peru, Columbien.
12. Caligo uranus Herrich-Schaffer.
Caligo uranus, Herrich-Schaffer, Exot. Schmett. p. 55, f. 1-2 (1850).
Caligo uranus, Westwood, in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 8 (1851).
Pavonia uranus, Boisduval, Lép. Guatém. p. 57 (1870).
Caligo uranus, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 136 (1881).
Caligo uranus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1. p. 215 (1887).
Pavonia telemachus, Hewitson, in Zoologist. Vol. 8, p. 2976 (1850).
Mexico, Honduras, Guatemala.
FAM. NYMPHALIDA® 41
Sectio Il. ANAGRAPHI
Hintertliigel des oh ohne Haarpinsel auf der blanken Reibeflache am Hinterrand.
Cohors |. OILEIFORMES
Vorderfliigel ohne gelbe Apicalfarbung.
13. Caligo oedipus Stichel.
a. Caligo oedipus oedipus Stichel.
Caligo oedipus, Stichel (Maassen M. S.), in Ins. Bérse Vol. 20, p. 389, n° 10 (1903) (1).
&. forma necturnus, Stichel, eodem.
Columbien.
). Caligo oedipus fruhstorferi Stichel.
Caligo fruhstorferi, Stichel, in Ins. Bérse, Vol. 21, p. 21, n° 24 (1904) (2).
Honduras, Surinam.
14. Caligo oileus Felder.
a. Caligo oileus oileus Felder.
Pavonia oileus, C. uu. R. Felder, in Wien. Ent. Mon. Vol. 5, p. 111, n° 106 (1861).
Pavonia oileus, dieselb. in Reise Novara Lep., Vol. 2 (2), p. 454, n° 52, t. 65, f. 2 (fig. typ ) (1865).
Caligo oileus, Herrich-Schiafter, in Corr. Bl. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 65 (1865).
? Caligo oileus, Godman u. Salvin, in Biol. Centr. Amer Rhop. Vol. 1, p. 132 (1881).
Caligo oileus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 216 (1887).
Columbien, Central-America (?).
b. Caligo oileus umbratilis Stichel.
Caligo oileus umbratilis, Stichel, in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 389, n° 11 (1903) (3).
Caligo oileus, Felder (partim).
Peru, Columbien
Cl) Caligo ozdigus. Supra valde similis C. fezcro Linnaei: Alarum anticarum area basali et costali, interdum quoque area discali (forma
nocturnus, m.), ferraginco-cinerascente, fascia ultracellulari angusta dilutiore, limbo externo fusco, fascia valde indistincta submarginali imperfec a
deabus maculis obscuris subapicalibus albo-notatis ; alarum posticarum area basali caesia, virescenti-micante, in limbo posteriore flavescente striga nitida
sine penicillo. Subtus omnibus candidis, obscuro-striitis et notatis ut in C. fewcro sed alarum posticarum fascia discali brunnea lata, ocellos duos
amplectente. Differt a C. fewcro supra absentia penicilli in striga nitida, subtus absentia maculae tertiae mediae inter venas radiales alarum posticarum.
Groésse und allgemeiner Habitus wie C. feuwcer. Vorderfliigel oberseits an der Basis und dem Costalfeld graubraun, hinten leicht graublau
angeflogen. Medianzone in einem proximal ungewiss, distal etwas schirfer begrenzten Streifen weisslich ; dieser Streifen verschmilert sich vorn und
reicht bis zur Gabel von Subcostalis 4 und 5. Vor dieser letzteren, im briiunlichen Costalteld eine leicht gelbliche, fleckartige Aufhellung. Randfeld breit
schwarzbraun, distale Begrenzung ziemlich gerade, dicht ander binteren Zellecke querlaufend. Vorn vor Subcostalis 4 und 5 je ein dunklerer Fleck, der
distal von einem kleinen weissen Funktfleck begleitet ist. Saum etwas heller abgetont und unweit desselben eine in demselben Farbton gehaltene, sehr
ungewisse schmale Submarginalb‘nde. Hinterfliigel mit breitem weisslich gelbgrauen Hinterrandsteil, in dem sich vorn eine von S M geschnittene, langliche
schuppenlose, quergestrichelte, blanke Reibefliche ohne Haarpinsel befindet. Costalfeld grauweiss mit schwarzlichem Mehlfleck vor der S C. Basalfeld
bis gegen das Ende der Zelle graublau, bei schriger Belichting griinlich irisierend, die ibrige Fliche schwarzbraun, Saum schmal, in der Mitte der
Aderzwischenriume fleckartig, weisgrzu. Unterseite weislich, braun und grau marmoriert und gestrichelt ahnlich wie bei C. ¢emcer aber lichter, die
distal der Zelle hinziehende schmale transversale helle Querbinde fast gerade, nur hinter der Zellecke und im letzten Verlauf etwas gekriimmt, die
submarginalen Wellenlinien gleichmissiger gebogt, nur ein Auge zwischen den Radialen. lm medianen Teil markiert sich eine beiderseits dunkler braun
angelegte breite Transversalbinde. in der keine Strichelung vorhanden ist. Hinterfliigel mit breiter, fast vollkommener brayner Querbinde, in welcher
die beiden Ocellen gelegen sind. Der bei C. texcer vorhandene dritte Fleck an der M D C felilt stets. Im itbrigen ohne wesentliche Verschiedenheiten
gegen genannte Art, mit der die yorliegende gewohnheitsmiissig verwechselt zu sein scheint und von der sie sich hauptsichlich specifisch durch den
fehlenden Haarpinsel oberseits und Mangel des mittleren Augenfleckes an der M D C unterseits des Hinterfliigels unterscheidet. Q grésser, etwas
lichter gefarbt, die sabmarginale Binde des Vorderfligels deutlicher und 3 statt 2, distal weiss betup{te Subapicalflecke. Typen in coll. Stichel und in coll.
Mus. Berolin.
(2) Caligo vedipus fruhstorferi.—G Supra valde similis C. tewcro Linnaei et C. oedifo tvp. Alarum anticarum area basali et costali
supra pallescenter ferrugineo-cinerascente, signaturis irregularibus partis inferioris in cellula translucentibus, area posteriore caerulescenti-grisea
ascia ultracellulari angusta, pallide-ochracea, area externa late fusca, fascia perquam indistincta submarginali, maculis 3-4 nigrescentibus subapicalibus,
harum anterioribus albo-notatis; alis posticis subrotundatis, atro-fuscis, margine vix undulato, area basali caesia, virescenti-micante, limbo externo
albescente, posteriore flavescente cum striga nitida sine penicillo. Subtus omnino candidus, obscuro-striatus, variegatus, in cellu'a anticacum signaturis
irregularibus, alarum posticaruim fascia discali brunnea lata transversali, ocellos duos involvente, in anticas indistinctius producta ut in Cadigo oedipo typ,
sed pigmento livido magis extenso in cellula alarum anticarum, quarum long. 62 mm. — © major, alis anticis obscurioribus, fascia submarginali
pallide-ocl.racea satis distincta, undulata, limbo externo fuscu-ochraceo, posticis area basali caesia ampliore quam in mari, Al. ant. long. 72mm.
Unterscheidet sich von der typischen Form hauptsichlich durch den etwas reichlicheren blauen Ueberguss des Vorderfliigels, gleichmissigere.
aber diinnere graubraune Bestiubung der Costalzone, welche sich distal breit an die helle Ultracellular-Binde anlegt und in der die unregelmissigen
Zeichnungen der Unterseite deutlicher durchscheinen, am auffalligsten jedoch durch die Form des Hinterfliigels, welcher einen fast vollen, gerundeten
Saum zeigt und nichtdie wellenformigen Ausbuchtungen der Stammform Die Ocellen der Hinterfliigelunterseite sind, obwohl diese Form im allgemeinen
etwas kleiner ist als oedipus typ., grosser. Typeni. coll. Fruhstorfer und Stichel.
(3) Caligo cilens umbratilis. Differt a forma typ. alis anticis valde infuscatis, interdum fascia multo dilutiore ultracellulari.
Von der typischen Form durch stark gebraunte Vorderfliigel ohne blauen Schimmer unterschieden, auf denen die ultracellulare Querbinde
mitunter sehr auffallig und scharf abgesetzt ist. Typus in coll. Thieme, Berlin und i. coll, mus, Tring {1 Exemplar e coll. Felder, Columbien).
42 LEPIDOPTERA PHOPALOCERA
c. Caligo oileus scamander Boisduval.
Pavonis scamander, Boisduval, Lép. Guatém., p. 57 (1870).
Caligo oileus var. philademus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 216 (1887).
Guatemala bis Ecuador, Venezuela.
d. Caligo oileus philinos Fruhstorfer.
Caligo otleus philinos, Fruhstorfer, in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 413 (1903).
Caligo oileus philinos, Fruhstorfer, in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16, p. 315 (1904).
Caligo philoxenus, Staudinger, 1. 1.
Bolivien.
15. Caligo zeuxippus Druce.
Caligo zeuxippus, Druce, in Ann, Nat. Hist. ser. 7, Vol. 9, p. 321 (1902).
Ecuador.
16. Caligo placidianus Staudinger.
Caligo placidianus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett, Vol. 1, p. 216 (1887).
Caligo placidianus, Michael, in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 7, p. 232 (1894).
Caligo placidianus var, micans, Rober, in Soc. Ent. Vol. 18, p. 146 (1904).
Ob. Amazonas, Peru, Ecuador.
Cohors I]. BELTRAOFORMES
Vorderfliigel mit gelber A picalfairbung.
17. Caligo beltrao Illiger.
Papilio beltrao, Uliger, in Mag. Ins. Vol. 1, p. 199 (1801).
Caligo beltrao, Geyer, in Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 3, t. 15 u. 15bis (fig. typ.) (1816-24).
Caligo beltrao, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342, n° 11 (1851).
Caligo beltrao, W. Miller, in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 597 (Biol.) (1886).
Caligo beltrao, Staudinger (u, Schatz). Exot. Schmett. t. 75 (1887).
Papilio demosthenes, Perry, Arcana, t 31 (1811) ‘
Caligo demosthenes, Westwood, in Doubleday, Wetwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p.342, n° 10 (185r).
Caligo demosthenes, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 215 (1887).
Caligo demosthenes, von BOnninghausen, in Verh. Nat. Ver. Hamb. Vol. 9, p. 37 (1896)
Caligo demosthenes, Kirby, in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 53 (1901).
Morpho (Pavonia) inachis, Godart (Latreille u.), Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 449, n° 28 (Suppl. p. 807) (1819).
Morpho inachis, Lucas, Hist. Nat. Lép. Exot. p. 138, t. 64 (1835).
Caligo inachis, Westwood, in Doubleday, Westwood-u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 342 (1851).
Caligo inachis, Burmeister, Descr. phys. Rép. Argent. Vol. 5 (2), p. 20, t. 16 (Biol.) (1879).
Morpho reinwardtianus, Drapier, in Ann. Soc. Phys. Brux. Vol. 7, p. 278, t. 109.
Stid-Brasilien, Arventinien, Peru.
Die in vorliegender Arbeit gewahlte Gruppierung der Arten und Formen griindet sich auf ein
mehrjahriges Studium der « Brassoliden ». Dieses Studium wiirde aber trotz eines umfangreichen
eigenen Materials, welches sich im Laufe der Zeit angesammelt hat, doch nicht zu einem vdllig befriedi-
genden Abschluss gefiihrt haben, wenn mir nicht von verschiedenen Seiten in liebenswiirdiger und
dankenswerter Weise mancherlei Unterstiitzung zu teil geworden wire. So hatte ich nicht nur Gelegen-
heit, das Material einzelner grésserer Privatsammlungen, insbesondere derjenigen der Herren Prof.
D* Thieme, H. Fruhstorfer und H. Thiele in Berlin, eingehend zu sichten, sondern es war mir auch ver-
g6nnt, die reichhaltigen Sammlungen des Kéniglichen Zoologischen Museums zu Berlin und des verstorbe-
nen D? Staudinger in Blasewitz-Dresden, Besitzer Herr Bang-Haas, an Ort und Stelle durchzuarbeiten.
Als wesentlichstes Moment, welches bei der Arbeit an manchen Stellen entscheidend und im allgemeinen
abschliessend wirkte, kommt aber der Umstand in Betracht, dass mir neben einem vorziiglichen allge-
meinen Studien-Material aus den Museen der Herren Walter von Rothschild in Tring, durch freund-
lichste Vermittelung des Herrn D* K. Jordan, und Charles Oberthiir in Rennes die meisten der bisher
FAM. NYMPHALID/ 43
ganzlich unsicheren und meist verkannten Originale Felders und Boisduvals in zuvorkommender Weise
zur Verfiigung gestellt waren. Hierdurch war es erméglicht, die Identitét und Synonymie der betref-
fenden Typen mit absoluter Sicherheit festzustellen und kann diese Schwierigkeit als tiberwunden
erklart werden. Anders allerdings gestaltet sich der Versuch einer natiivlichen Gruppierung der indentifi-
cierten und neu beschriebenen Formen unter sich, namentlich innerhalb der Gattungen Opfsiphanes und
Caligo. Hier hat,da die Morphologie der mannlichen Genitalwerkzeuge, die in schwierigen Fallen ein
schatzbares Hilfsmitte] in der Systematik liefert, sich dazu nur wenig oder gar nicht als geeignet erwies,
mitunter die Subjectivitat fiir die Lésung der sachlichen Aufgabe zur Hilfe genommen werden miissen.
Wenngleich sich das Auge mit der Zeit bei diesem Spezial- Studium an die kleinsten, zur Arttrennung
und Zusammenziehung brauchbaren Charaktere der, trotz ihrer meist hervorragenden Grdésse, haufig
ausserordentlich ahnlichen Falter gewdhnt hat, und jeder zweifelhafte Fall einer mehrfachen, ja
vielfachen und sorgfaltigsten Priifung, unter Beriicksichtigung aller anderen Méglichkeiten, unterzogen
worden ist, so blieb in einzelnen Fallen doch nur ein Wahrscheinlichkeits-Schluss ausschlaggebend und
ist ein Fehlgriff hierbei immerhin denkbar. Es méchte deshalb der Fall einer nachsichtigen Beurteilung
empfohlen werden, wenn sich itiber kurz oder lang herausstellen sollte, dass die eine oder andere
benannte Form ihre natiirliche Stellung in der Reihe oder ihren Charakter als Art, Unter- oder
Abart andern miisste. In erster Linie wird hierbei die Erkenntnis Anlass geben, ob und wie der Wechsel
der Jahreszeiten verindernd auf Form und Farbung der Individuen einwirkt oder welche Unterschiede
in den verschiedenen HGhenlagen des Fluggebiets einer Art konstanten oder veranderlichen Charakters
sind. Diese, fiir die systematische Gliederung so ausserordentlich wichtigen Momente haben mangels
gentigender Angaben und Unterlagen fast gar keine Beriicksichtigung finden kénnen und bleibt es der
Zukunft tiberlassen, hierin Klarheit zu schaffen und, soweit nétig, Correcturen vorzunehmen.
Der in Kirby’s Cat. of diurn. Lep. Suppl. p. 716, aufgefiihrte Opsiphanes lutescente-fasciatus (Goeze)
wurde nicht registriert, weil dessen Existenzberechtigung unsicher ist; zu vgl: Berl. Ent. Zeit.Vol. 46,
Pp. 519 (1901).
ALPHABETISCHES INHALTIS-VERZEICHNIS
(Synonyma sind cursiv gedruckt. )
A. GATTUNGEN.
Seite Seite
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Calico ee eS ae On el eo cme RO MON MONE 33 INEMOEG 6 5 oo oe o Gb Oe ob wo 0 40 13
(GUD me ee Be 69 5 9 6 MOL WS, G2, BB), Bho) OVC 6 6 & 0 6 tho o bP ps po Oo 22
PALO DIE PIA ae era go ie a heey Voy 25 OpespNeES oc o 6.6 6 © 6 @ 0 0 5b 6 oO 6 16
Dasyophthalma . . Bch San eee eae mee ee 10 OPSGAHHUES o 4 6 6 a 6 bon 6 0 0 B82 25, Be, BO
DAS OLMIS. em aR) ee, Gey ck? Gg 8 JAGGER do OD OH ED Oe 2
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JETT. eR. Ey) Ser a RN ee 22 POI 6 9 6 6G 6 6 6 oo 0 Gg oy Gh HG, 2D) SS
Euryphanis. . Be Ok Cet cic tie Enron eee 30 SGMOpPERGHE. 6 0 doe 0 6 o ao of a oO 28
44 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
B. ARTEN,
acadina, Morpho (Opsiphanes, Pavonia)
aequatorialis, Opsiphanes cassina.
aesacus, Eryphanis (Caligo, Eryphane)
aesacus, Eryphanis aesacus .
aethon, Opsiphanes .
agamemnon, Caligo.
agamemnon, Caligo idomeneus.
agesilaus, Caligo.
agesilaus, Caligo atreus
ajax, Caligo (Pavonia) .
ajax, Caligoatreus. ~
alba, Opsiphanes tamarindi var.
albopunctum, Narope.
alcimedon, Papilio (Caligo, Ery, Hinman
amphimedon, Eryphanis polyxena.
amphimedon, Pavonia (Caligo, Eryphanis) .
amphirhoé, Catoblepia (Brassolis, Opsiphanes) .
amplificatus, Opsiphanes invirae .
amplior, Selenophanes cassiope
anartes, Narope -
auaxandra, Morpho (Pavonia) .
anaxarete, Papilio (Dynastor, Morpho)
anaxarethus, Papilio .
andicolens, Caligo eurilochus
andromeda, Selenophanes (Opsiphanes)
andromeda, Selenophanes andromeda
aorsa, Opoptera (Morpho, Opsiphanes, Pavonia) .
aorsa, Opoptera aorsa .
ardens, Brassolis sophorae
arisbe, Caligo.
arsippe, Opoptera (Grernen)
arsippe, Opoptera arsippe
astyalus, Brassolis
astyra, Brassolis.
astyra, Brassolis astyra
atreus, Caligo . :
atreus, Caligo (Morpho)
atreus, Caligo atreus .
automedon, Exyphanis. &
automedon, Papilio (Pavonia, Caligo, MoAe)
automedaena, Moecra .
badius, Opsiphanes quiteria
baronesa, Dasyophthalma creusa .
bassus, Opsiphanes.
batea, Opsiphanes (Caligo)
belisar, Catoblepia xanthicles .
belisar, Opsiphanes .
bellerophon, Caligo
beltrao, Caligo (Papilio)
berecynthia, Catoblepia (Gronnes Papilio)
Seite.
UNTERARTEN UND ABARTEN
berecynthia, Catoblepia berecynthia . Gils
berecynthina, Catoblepia berecynthia . .
berecynthina, Opsiphanes .
berecynthius, Papilio . 0 9
berecynthus, Catoblepia (Morpho, arene)
berecyntia, Potamis superba.
bogotanus, Opsiphanes tamarindi.
boisduvalii, Opsiphanes .
boliviana, Opsiphanes quiteria var.
bolivianus, Opsiphanes quiteria ..
bracteolata, Opsiphanes arsippe
brasiliensis, Caligo eurilochus .
brasilien is, Pavonia eurylochus, var.
bubocula, Caligo, Eryphanis
buboculus, Eryphanis aesacus .
caesia, Caligo eurilochus.
caesius, Caligoeurilochus. .
camena, Opsiphanes
caryatis, Morpho .
cassiae, Opsiphanes (Brassolis, Morpho, Papilio,
Pavonia, Potamis).
cassiae, Opsiphanes cassiae .
cassiae, Opsiphanes (Morpho, Papilio, Fen Ay
cassiculus, Opsiphanes cassiae.
cassina, Opsiphanes
cassina, Opsiphanes cassina.
cassione, Opsiphanes 00
cassiope, Selenophanes (Ofsiphanes, Papilio)
cassiope, Selenophanes cassiope
cassiopeia, Selenophanes cassiope.
cassiopus, Papilio.
castaneus, Opsiphanes cassiae .
catharinae, Opsiphanes
chiriquensis, Opsiphanes cassina .
corrosus, Opsiphanes tamarindi
crameri, Opsiphanes
creusa, Dasyophthalma
creusa, Dasyophthalma creusa .
cuspidatus, Opsiphanes invirae
cyllabarus, Narope.
cyllarus, Narope
cyllastros, Narope .
cyllastros, Narope cyllastros
cyllastrus, Narope
cyllene, Narope
dardanus, Pavonia 5
darius, Dynastor (Megastes) .
darius, Dynastor darius .
delaniva, Dasyophthalma. . .. .
FAM. NYMPHALIDA® 45
Seite. Scite.
demosthenes, Caligvo (Papilio). . . . 2 2 . 2 : 42 ASTIN, CAM) TOMES 5-6 6 5b 6 a 6 oO oe 35
denfinasGaligors Gee ce =, = ck eo & sys 40 intermedia, Opsiphanesinvirae var. . . ... . 21
dentinas Gaheo athens sient) aaa! enon 40 intermedius «Opsiphanesiinviraey rails) eye ae 21
didymagn.Opsiphaness tans amyen cp ie) cae 17 invirae, Opsiphanes (Brassolis, Potamis). . . . . 21
ditatus, Selenophanes supremus . .....- . 30 TAPAS, OS pwMewNas torso 5 6 o 6 6 Oo 9 21
dohrni, Opsiphanes xanthus. . . . . .... 26 nena, ISON 5 5 2 6 46 6 6 6 6 0 6 6 8
epimetheus, Caligo(Pavonta) . . . » . . =. 36 PGND; CAMNGO (OUCH 5 6 6 ol o go ow 6 6 68 35
epimetheus, Caligo prometheus . . .-. . . . 36 josephus, Selenophanes (Opsiphanes) Pres Ascites Coin eS 30
euphorbus, Caligo (Pavonia). . . . . .- . =. . 39
euphorbus, Caligo idomeneus forma. . ... . 39 LORS CORRE 3 oo 6 6 6 6 8 5 6 0 6 7
Curslocnon CAlikOn mt-st enn coe es) eee ee 37 Niviusy:CalicioKs gents pst ee kemnen ey Oye tytn 37
eurilochus, Caligo (Papilio). . . . . . . .. 37 iis, Cain Gralla, s 5 o o » 0 9 0 6 37
eurilochus, Caligoeurilochus . . . ... ... 37 Livanise Gale covrelanLovetsicLU ane eee 37
eurylockus Caligo (Morpho, Papilio, Pavonia) . . . 37,38 LyCAOmM MP AVONIGA Ste Ltate, its ies eet ee ee ae II
excultus, Selenophanesjosephus . . . ... . 30 lycomedon, Caligo (Pavonia). . . . . Sate ie ae
lycomedon, Eryphanispolyxena ...... . 32
fADEICIUKGUILON | el hee Se, Soe aes) 21 lurida, Brassolis, sophorae
fabricii, Opsiphanes cassina. . . . . .... 21 luridus. Brassolisisophorae! ey) cunt acer nec 7
farraxo, Opsiphanes salle | 2 275 5 5 6 =] 20 luteipennis, Opsiphanes bassus forma . . . . . 18
fruhstorferi, Caligooedipus. . ....... 41 lutescentefasciaiis, Opsiphanesn-0 4) Ge isn cls 43
fruhstorferi, Opoptera (Ofsiphanes)) . . . . . . 24 luxoriosa, Catoblepia berecynthia. . . . . . . 28
mast OpepiGrmimal® 6 6 5 6 6 5 6 6 6 6 24 luxoriosus, Catoblepia berecynthus . . . . . = . 28
PalbanGalico|(Pavonia) i, = 1 2) 38 WOEKMOSNS, IDWWARO? 5 5 5 a o 6 5 5 6 © 6 10
falbas Galicoeunilochus.) =) 5. 9 3 =e 38 macrosiris, Dynastor macrosiris . ..... . IO
menGrasey (CHG EEN A of clo Go a Go 6 28 magnalis, Catoblepia orgetorix. . . . ... . 27
ELNALGT GOI Oiee ee inns. Vertue ais) ee se totes 32 peoEhatiboot), lerelo)bis WKN 5 6 c 4 6 o 0 6 8
SCH Ba peOiS! Bon Go 4) toe oe 10 ae fo 32 TUES, IPOS Wa 5 6 5 6 0 65 6 0 8
glycerie, Opsiphanes (Papilio), . . . . . . =. 18 THOT hry NERO oo 6-6 0 6 Bb G 6 o OD 15
granadensis, Brassolis- 2 | 2 2 = 2 3 Cs 8 marsus, Caligoidomeneus forma. . .... . 39
martia, Caligo (Morpho, Pavonia) . . . ... . 40
HAGTISCHIS BraSSOUS)-5 woe ta mia et gir ( -1 tf ts 8 memnon, Caligo (Pavowia) . . . . . +... =. 36
haenschi, Brassolishaenschi ....... . 8 jsaXssovb ooo, (CATO) TIEN, 5.56 610 0 6 0 9 1 36
MinersCREAGAUC Oana (lke ion el te Wa ee) 36 oats, (CANTO TNEMNIIN 5 59 56 6 © 0 0 6 0 9g 37
WORAIUGP APY TAStO o thent ne) iy ce) 2) ch ets 10 POOH, CAWEOs 0 00,0 9 910 0 0 9 9 0 39
RELQCANSOPSIPNATES teen. Fn eye enue 2 27 THTEDS, (CAME) ISGINOS 5p 5 6 0 6 6 9 6 0 2 37
hemichroa, Caligo(Eryphanis) . ....%:.. 33 merianae, Opsiphanes cassina. . ..... . 21
hijaca,, Opopterardorsas | > | Gh ee 23 meridionalis, Opsiphanes quiteria, . . . ., . 20
micans, Caligo placidianusvar.. .-. .... . 42
(APG, CENRGEs
3. Enispe cycnus Westwood. — Tafel Fig. 7 (Q).
Enispe cycnus, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 330, Fussnote (1851).
Enispe cycnus, Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp. Vol. 1, p. 212 n° 434 (1857).
Enispfe cycnus, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 303 (1883).
Enispfe cycnus, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 201, t. 157 f. 1, ra-c (1895) (1).
Enispe cycnus, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butterfl. Vol. 1, p. 199 (1905).
Sikkim, Bhutan, Assam, Silhet, Shan.
Bei der Einteilung der Arten der Gattung Discophora wurde etwas von der auf Grund der
Beschatienheit der mannlichen Copulationsorgane meinerseits friiher gewahlten Gruppierung (Deutsche
Ent. Zeit. Vol. 15, 1902) abgewichen, weil sich diese nicht fiir eine leicht verstandliche Analysierung
nach dusseren Merkmalen eignete. Die Trennung und Zusammenziehung der beschriebenen Formen
blieb jedoch dieselbe. Ihre Feststellung beruht auf sachlicher Priifung der Verwandtschaft nach der
Morphologie der genannten Organe, welche sich fiir den Zweck als sehr geeignet erwiesen und, mit
wenigen Ausnahmen, einen sicheren Schluss zu ziehen erlaubten. Das zur Verfiigung stehende und
friiher von verschiedenen Seiten (conf. obiges Citat) tiberlassene Vergleichsmaterial wurde neuerdings
durch eine Serie des seltenen Evnispe lunatus aus der Sammlung des Herrn Charles Oberthiir, welche die
Auistellung einer neuen Form dieser Art erméglichte und als ratsam erscheinen less, in dankenswerter
Weise erganzt.
AEA B EIS CEE Se IN EVA aS Vike CENTS
(Synonyma sind kursiv gedruckt.)
A. GATTUNGEN, SECTIONEN, COHORTEN
Seite. Seite .
AGHUPTS «og Me co eae ER) eee eta II Moera 0 5
Rebmdtionmess (5) sessis- co ck) SoG be oe 6 Morpho . 0 0 5
Cycniformes . j 12 Nechoformes . 7
Discophora 5 Oginiformes . 8
Discophorus. 5 Simpliciformes 10
Enispe . E II Sondaiciformes 9
Enispe 5 Stenopoecili 9
Eurypoecili at Ss 6 Zerynthia 5
UE MNEMORMICS: aise Ppt tek a foirgts sy fa. fe sk 12
(x) Die Abbildung Moore's, loc. cit., stimmt weder mit der Originalbeschreibung, noch mit dem Text p. 201 tiberein. Die Vorderfliigelbinde ist
anstatt bis zum vorderen, bis zum hinteren Medianast geschlossen und hinter ihr ist nur ein Fleck abgelost, auch sind die Hinterfligel lebhatter gezeichnet
als bei Stucken aus Bhutan und Sikkim, die in natura vorliegen und beziglich der Zeichnung des Vorderfligels besser auf die Beschreibung passen. Bei
Stiicken aus Sikkim ist die Vorderfligelbinde zwar auch nicht von VM an vollig in Flecke aufgelést, aber der nach hinten gerichtete Teil an der Distal-
Berandung in der Mitte der Aderzwischenraume tief eingekerbt, am seinem Proximalrande an den Rippen eingeschnitten, so dass eine Reihe von 3 lose
zasammenhangenden herz- oder pfeilformigen Flecken entsteht. Sollte es sich bei dem in Lep. Ind. abgebildeten Exemplar nicht um eine ungetreue
Reproduction handeln, so kann angenommen werden, dass die Abbildung nach einer varianten Form angefertigt worden ist, welche dann den Namen
Enispe cycnus forma erosa fahren mag. Der reicheren Zeichnung nach zu urteilen kann es sich um eine Zeitform (forma f/uviatz/ts ?) handeln.”
I4 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
B. ARTEN UND FORMEN
amethystina, Discophora.
andamanensis, Discophora celinde
andamensis, Discophora celinde var.
andamensis, Discophora continentalis
avistides, Papilio .
bambusae bangkaiensts, Discophora .
bambusae celebensis, Discophora
bambusae, Discophora
bangkatensis, Discophora bambusae .
celebensis, Discophora .
celebensis, Discophora bambusae
celinde andamanensis, Discophora
celinde celinde, Discophora .
celinde continentalis, Discophora
celinde, Discophora (Morpho, Papilio).
celinde, Discophora .
celinde, Discophora celinde .
celinde timova, Discophora
celinde undata, Discophora. . .
celinde vay. andamensis, Discophora
cheops, Discophora.
cheops, Discophora .
cheops, Discophora necho
cheops var, mindorana, Discophora .
cheops var. palavanicus, Discophora.
continentalis (ab.) forma seminecho, Discophora.
continentalis andamensis, Discophora
continentalis continentalis, Discophora .
continentalis, Discophora
continentalis, Discophora celinde
continentalis, Discophora continentalis .
continentalis perakensis, Discophora.
cycnus, Enispe .
cycnus forma erosa, Enispe .
deo deo, Discophora
deo, Discophora .
deo, Discophora deo
deo fruhstorferi, ‘Discophora.
despoliata, Discophora sondaica forma .
despoliata, Discophora tullia sondaica ab. .
dis, Discophora .
dis, Discophora necho,
enervata, Enispe lunatus forma.
erosa, Enispe cycnus forma
euthymius, Enispe (Adolias) .
euthymius, Enispe
euthymius euthymius, Enispe
Seite.
10
“Ni
neite.
CUM Aras mM, IMNGIS 6 4 2 «6 a 5 a 5 0 1Z
euthymius tesselatus, Enispe . . Me : 12
euthymius var. sylhetensis, Enispe. . SD ead tae 12
fruhstorferi, Discophora deo. 7
indica D1scophoralsss paneer enn ai 8 re)
tnatCe a OISCOPhOLa se eee Be esi Sig 10
indicawDiscophoralsondalcamy.uss mene 10
indica s«Discophoraytulizai(vat-.)\e swe ee 10
lepidaksDiscophorak(E777spe) Neuen ey en 9
lepida forma (ab.) significans, Discophora. . . . 9
lepida significans, Discophora. . . . . .. . 9
UGATEO. IONE 5 8 5 5 oo oto 6 5 6 9
MMTV, IBWIINS 6 5 Gn wo GO epee 6 Ms 12
lunatus forma enervata, Enispe. . ASU Oc ae 12
melinda, Discophora 8
menetho, Discophora (Discophorus, Morpho, Papilio) 6, 7, 8
OMIA, JAS Geb 5 a) Mea oh Bi ol etna my 6 12
MilvwtsenIspereuthy mise i eee ee 12
mindorana, Discophora cheops . . . . . ... 8
MUscinawHiscophorayes eee eMC a wen Io
muscina, Discophorasondaica. . ..... . 10
muscina, Discophoratullia@ . . . . . . . : 10
necho cheops, Discophora . . . .. . B 0 8
nechold7ssDiScOphorasyes enn eon-v us ae stte 8
me cho w#DiScophorayy-yu minnie nue vlna ine: 7
R1eChOMDISCOPNOLA aw me ee i ea 8
mechoDiscophoramechouns ty a-t cies nes nn 8
mechomechosDiscophora sic mnCne- tale mene 8
necho odora, Discophora. . . . 8
necho propinqua, Discophora . . . . , 8
odora, Discophora necho .
co
ogina, Discophora (Morpho, Zerynthia)
Cc co
ogina, Discophora
palavantcus, Discophora cheops var. .
perakensis, Discophora
perakensis, Discophora continentalis.
philippina,)Discophorawe-u- weenie ment
philippina, Discophora necho
co COaoN “I @&
propinqua, Discophora necho .
seminecho, Discophora continentalis forma (ab.). . 7
THM, IDVNTIYONNSGA, so o a, 5 o 6 5 6 0 0 10
semperi, Discophorasondaica. . . ....- . 10
FAM. NYMPHALID 15
Seite.
semperi, Discophora tullia@ . . 2. 2. 2 2s IO
significans, Discophora lepida (forma, ab.). . . . 9
Semple xe ISCOPHOLAg Mra eu gy as ease te) 10
sondaica, Discophora. . . . RMA, vate cores 9
sondaica, Discophorasondaica. . . .. . . . 9
sondaiGasndicas Discophoras li) su) fs se) tO
sondaica indica forma spiloptera, Discophora. . . 10
sondaica indicaforma zal, Discophora . . .. . 10
sondaica muscina, Discophora. . ..... . 10
sondaica semperi, Discophora. . . .... . Io
sendaica sondaica, Discophora. . . .... . 9
sondaica sondaica forma despoliata, Discophora. . 9
sondaica sondaica, Discophora. . . .... . 9
sondaica tulliana, Discophora. . ...... 9
Splleprera, DP IScCOphOrany rs) 2) sells) Vereen) de ls ag)
spiloptera, Discophora sondaica indica forma. . . 10
spiloptera, Discophora tuliaab. . . . . . . . bo)
Splloptera, Discophora.gat 2 35 = 2 2. 2. 5)
sylhetensis, Enispeeuthymius var... . . . . . 12
hesseidia wPMISper a) se eroih= | so) say aie! cs. is Si te 12
tesselatus, Enispeeuthymius . ..... .. 12
MMOra ROISCOPNOLAr ei ey ee) sens i
Seite.
Horie IONE Cathe 5 4 5 5 6 6 a 6 9 7
tulliaab. spiloptera, Discophora . ..... . 10
tullia ab. zal, Discophora . pate nce eat oo) ti so)
tullia, Discophora (Moera, Morpho, Papilio). . . . 9
(oae TeveNCE, IONECOQ ONCE, 5 9 6 5c do 9 © 9 2 10
tulléa indica (ab.) forma spiloptera, Discophora . . 10
tullia indica (ab.) forma zal, Discophora. . . . . 10
PHIE OUSCE),, IDISCO ONCE 5 5 0 614 6 oe ¢ £0
PAID Seo ere, IONACOPNIOE, 5 6. oo 9 b 4 8 6 Bo)
tulléa sondaica, Discophora . Rae
tullia sondaica forma (ab.) despoliata, Discophora
CUTE (SAO), IDNTGOPINOE G15 66 5 0 a a a o 10
tullia var.indica, Discophora . ...... .- 10
tulliana, Discophora sondaica . . . . . . . 9
undatals DiscophoraycelinG elas. a sass sii lili: I
Hall; DISKO NNE 5 oo) 6 6b el 0 be Go: a 10
EH, IDISCONN a fg! ode fo oe Uo 6 6 ha Oy UO
zal, Discophora sondaicaindicaforma . ... . 1e
ZAM, IDC NOAA GIDs on 6 co 6 6 He OO TO
Zalspiloptera Oiscophoram ees eye ee einen eye 10
ERKLARUNG DER ABKURZUNGEN
C = Costalis (Costale) : Costalader. nicht zu
verwechselen mit Costa = Vorderrand (Cos-
talrand).
D = Discocellularis (Discocellular- oder Discoi-
dalader).
VDC = Vordere Discocellularis (= ODC,
obere Discocellularader nach Schatz).
M D C = Mittlere Discocellularis
HDC = Hintere Discocellularis (= UDC,
untere Discocelluiarader nach Schatz).
H A = Hinterrandader (= I A, Innenrandader
nach Schatz).
M = Mediana (Hauptstrang der Medianader von
der Basis bis Aufnahme der H D).
H M = Hinterer Medianast (= M1, Mediana 1
nach Schatz).
M M = Mittlerer Medianast (== M 2, Mediana 2
nach Schatz).
V M = Vorderer Medianast (= M 3, Mediana 3
nach Schatz).
P C == Praecostalis (Praecostalader).
Rk = Radialis (Radiale).
H R = Hintere Radialis(= U R, untere Radiale
nach Schatz).
V R = Vordere Radialis (= O R, obere Radiale
nach Schatz).
SC = Subcostalis (Subcostalader).
S Cu, 2, 3, 4, 5 = Subcostalast 1-5 oder Subcos-
talis 1-5.
SM = Submediana (Submedianader).
16 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
ERKLARUNG DER TAFEL
Seite
Fig. 1. Schema des Fliigelgeiders der Gattung Discophova (D. necho SG). . . . . . . . . . 5
— 2. — — — IDHISEO (18, GHB Ce so 5 68 » o 0 « 0 © Ei
— 3, Dikeoalona deo jfrolson7e SACI Ge) a of a 2 6 6 6 6 6 0 8 oe hl CG
— 4. — GNDELRY STING SRICHEL HG Sais a) ray) cic eel eh sen, cee eg SM Med ney a ce teak oa ee oP ATS)
== 5, JBS2O URES OMe GRATE SON GO 5 5 es is he 6 6 ko 6 gl ED
em OM =e CULVINUSULESSCLOLUSWINI OOLE AG | aot aig wellvics Demeter votes) aoe Un ieee elu poe ey a) Ce mT)
SY Pe == eC CLUSUNNICStW OO COs cen) sat alah oe Sate a Ncpuiin ao caer ai Sn ils cong ea een 2
Fig. 1 u. 2 H. Stichel, Fig. 3-7 A. Wimmer ad nat. del.
Hagen in Westfalen, 1. Marz 1905.
CORRIGENDA und ADDENDA
zum 20. Fascicule : BRASSOLINA.
Seite 36, N° 30, 3. Citat : Statt « Caligo phorbas », ist zu setzen : « Caligo atlas ».
Seite 42, N° 14¢ : Als 3. Citat ist hinzuzufiigen : Caligo phorbas, Réber in Soc. Ent. Vol. 18, p. 146 (1904).
Seite 44, Index : Einzuschalten hinter « Astyra, Brassolis Astyra » : Atlas, Caligo. . . . . S. 36.
Seite 46, Index : Bei « phorbas, Caligo » ist zu setzen « S. 42 », statt « 36 ».
DER VERFASSER.
GENERA INSECTORUM _ LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
G. Amathuxidia ( Hh G, Thaumantis ( #)
G. Zeuxidia ic) G.Thauria (7) G. Stichophthalma (f)
FAM. NYMPHALIDE.
SUBFAM. AMATHUSIINE.
Al
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
G. Faunis (}-)
G. Aemona /}) Amathusia virgata Buti. 3
G. Taenaris (2) Amathuxidia plateni plateni Staudgr. 3
G. Xantholaenta G)
FAM. NYMPHALIDA
SUBFAM. AMATHUSIINE
2
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Discophora deo fruhstorferi ‘Stich. 3
Discophora amethystina Stich. 3
7 Vl Enispe cycenus Westw. 9
MM
G. Discophora
Eraspe lanatus forma enervata Stich. p
FAM. NYMPHALIDE&. Enispe euthymius tesselatus Moore é
SUBFAM. DISCOPHORINA,
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Aemona amathusia oberthiizi Stich. ie) Aemona lena Atkins. ke)
Stichophthalma neumogeni Leech ze) Stichophthalma louisa mathilda Janet. 3
FAM. NYMPHALIDA.
SUBFAM. AMATHUSIINE
A
Pos
a Po “
ine
oe aoa
en
a7) = =F
-
367 FASCICULE LEPIDOPTERA
(SENERA.
-INSECTORUM_
DIRIGES PAR
P. WYTSMAN
LEPIDOPTERA
RHOPALOCERA
FAM. NYMPHALID&
SUBFAM. AMATHUSIIN&
_von H. STICHEL
1906
PRIX : FR. 28.75
On souscrit chez M. P. WYTSMAN, Zoologiste, 43, rue Saint-Alphonse, a Bruxelles
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Wolter ope =
LEPIDOPTERA
FAM. NYMPHALIDA
SUBFAM. AMATHUSIINZ:
ai
ie
ett
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
FAM. NYMPHALID&
SUBFAM. AMATHUSIINA#
von H. STICHEL
MIT I SCHWARZEN UND 5 COLORIERTEN TAFELN
Sy ue Geschichte der Amathusiinae deckt sich im grossen und ganzen mit derjenigen der
ry; Discophorinae. Typischer Reprasentant der Untertamilie ist die Gattung Amathusia Fabri-
cius, welche mit ihren Verwandten in diejenige Sectio gehért, die Latreille (1825) als
: «les Nacrés » (Perlata) in der Tribus Pafilionides der 1. Familie Diurna in seinen « Familles
naturelles du Régne animal » bezeichnete. Th. Horsfield (1828) vereinigte die betreffenden Gattungen
mit einer Reihe Nymphalinae s. str., ferner mit der Gattung Morpho, gewissen Satyrinae u.a. als Thysanu-
viform-Stirps und nach dem System von Boisduval (1836) wiirden sie in die Tribus Morpfhides gehéren.
Eine ganze Reihe spaterer Autoren schliessen sich dieser Wahl an, nur in verschiedener Bildung der
Wortendung und unter wechselnder Bezeichnung der Einheit; so betrachten Chenu & Lucas dieselbe
als Divisio Morphites in der Tribus Nymphalidae, Distant (1886) in analoger Weise als Gruppe Morphina
der Subfamilie Nymphalinae. Eine nach den heutigen iN csaneralldlevanearerslin (1) giltige Benennung wihlte
Butler (1869) bei Aufstellung der Subfamilie Morphinae. Ihm folgen in gleicher oder fast gleicher
Ausdehnung des Begriffs mit derselben Wortbildung Kirby (1871), Druce (1873), Salvin u. Godman
(1877), de Nicéville (1882), F. Moore (1886), Semper (1887), W. Miller (1891), Leech (1894) u. a. Die
Meinung tiber die Ableitung oder Subordination der Subfamilie ist aber geteilt und wenn auch die
Mehrzahl dieser Autoren die Nymphalidae als nichst héhere Einheit betrachten, so geht bei etlichen
anderen doch die Ansicht dahin, die Morphinae den Satyridae oder einer dieser gleichwertigen und den
Nymphalidae nebengeordneten Familie zu unterstellen. Es sind dies W. Miller (1886) und E. Haase
t) Régles Internationales de la Nomenclature Zoologique adoptées par les Congrés Internationaux de Zoologie, Paris 1905.
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
bd
(1888 u. 91); ersterer fasste Morphinae, Brassolinae und Satyrinae als Familie Satyvidae zusammen, letzterer
stellte die Morphinae zur Familie Satyromorphain ahnlichem Sinne.
Wahrend nun hier tiberall die betreffende Einheit als Subfamilie aufzufassen ist, begegnen wir
derselben an anderen Stellen in etwa gleichen oder ahnlichen Grenzen als eigene Familie Morphidae.
Diese Bezeichnung finden wir bei Moore (1877), der seinen Standpunkt iibrigens spater verliess (s. oben),
bei Doherty (1886), Hagen (1897) u. a. Im weiteren vereinigten C. u. R. v. Felder (1866) und Hewitson
(1868) die hierher gehérigen Gattungen ganz oder teilweise unmittelbar mit den Satyvidae oder sie wurden
auf Nymphalidae und Morphidae verteilt, so bei Doubleday (1844) und Westwood (1850), und endlich
beschrankten sich etliche wenige Autoren darauf, die von ihnen behandelten Genera der hier gedachten
Gesamtheit unmittelbar als Glieder der Nymphalidae oder einer dieser nachgeordneten Einheit gleicher
Wortableitung zu behandeln; Herrich-Schiaffer (1864) und Piepers (1866) wahlten hierbei die Benennung
Nymphalina, Bates (1864), Moore (1878) den Namen Nymphalinae als Subfamilie.
Soweit nun in allen diesen Fallen nicht einzelne, in eine Ausnahme- oder Sonderstellung, insbeson-
dere bei den Nymphalinae oder Satyrinae, untergebrachte Gattungen, sondern eine, weitere Grenzen umfas-
sende systematische Gemeinschaft in Frage kommt, erstreckte sich diese stets mit auf das siidamerikanische
Genus Morfho. Erste Anregung zur Spaltung der ungleichen Glieder der Gesamtheit gab Schatz (1889)
durch Kennzeichnung der ungleichartigen Sectionen als « Morphiden der neuen und alten Welt », Moore
(1895) wiahlte fiir letztere die wissenschaftlich brauchbare Bezeichnung Amathusiinae als Subfamilie der
Nymphalidae, und ihm schlessen sich de Nicéville, Martin (1896) u. a. an. Reuter (1896) bezeichnet die
Einheit in gleichem Sinne als Tribus Amathustidi der Subfamilie Morphinae in der Familie Satyridae und
Stichel (1902) betrachtet sie unter gleichzeitiger Abtrennung der Discophoridae als eine den Nymphalidae
s. str. (= Nymphalinae, Morphidae und Satyridae) nebengeordnete Familie Amathustidae. Dieser Standpunkt
andert an der Einteilung sachlich nichts, ist nur formeller Natur und die Folge einer Auffassung des
Systems in dezentraler Richtung. Die durch v. Bénninghausen (1896) aufgestellte Familie Thaumantidae
deckt sich mit der Subfamilie Amathusiinae Moore und ist der Name deswegen zu verwerfen. Nach der
in neuester Zeit durch Rober und Stichel (1905) erfolgten Ablésung der Hyantidae (Hyantinae) verbleiben
in der Subfamilie endgiltig 10 Gattungen, welche zweckmassig nach der Morphologie des mannlichen
Copulationsapparates und nach dem allgemeinen Habitus in 2 Tribus eingeteilt werden. Die Gattung
Thauria nimmt zwischen beiden Tribus eine vermittelnde Uebergangststellung ein.
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Allgemeine Charaktere. — Kérperbau und Fliigelgeider der Amathusiinae ist im Verhdaltnis
zur Grésse der Tiere im allgemeinen nicht besonders kraftig aber meist proportioniert. Die Grésse
schwankt zwischen Mittel- und Oberstufe, die Form der Fliigel ist sehr mannigfaltig, neben einfachen,
abgerundet dreieckigen gibt es apical scharf zugespitzte und hinten gelappte Vorderfliigel, wie auch
ausser rundlichen und ovalen Hinterfliigeln solche mit Ecken und schwanz- oder zipfelartigen Anal-
fortsatzen vorkommen. Auch in Zeichnung und Farbung der Oberseite ist wenig Gleichmiassigkeit vor-
handen. So unscheinbar manche Gattungsvertreter sich in braunen und grauen Farbténen ohne oder
mit nur geringen Zeichnungen oder Schattierungen zeigen, um so lebhafter reizt das dunkle Sammet-
kleid anderer mit prachtig blau und violett schillernden Flecken und Binden unsere Sinanesempfindung.
Manche dieser Arten indessen sind geschlechtlich dimorph und die Weibchen entbehren dann in der
Regel des lebhafteren Schmuckes. Rot fehlt ganz, dagegen sind zart-violette, chokoladenfarben abge-
ténte Flachen neben lebhaftem Gold- oder Ockergelb, teilweise in Weiss tibergehend, mit dunklen,
eigentiimlich ornamentalen Randmustern bei den gréssten Vertretern der Subfamilie, die habituell
gewissen neotropischen Morpho-Arten dhneln, eigen. Bei einer etwas abgesondert stehenden Gattung
(Taenaris) endlich tritt ausser wirkungslos braéunlich oder grauem Farbton, Weiss im Fliigelfond auf und
die Hinterfliigel tragen nicht selten grosse, lebhaft conzentrisch schwarz und gelb angelegte Augen-
flecke. Ozellen, wenn auch grésserenteils in anderer Form und Anordnung, sind es auch, welche bei
allen Gattungen der Amathusiinae charakteristisch fiir die Unterseite sind. Mitunter treten nur zwei
solcher Flecke im Hinterfliigel auf, der eine vorn zwischen Subcostalis und vorderer Radialis, der
On
FAM NYMPHALIDZE
andere im hinteren Medianzwischenraum; beide fiihren nicht selten Nebenaugen, auch bildet sich eine
vollstandige Kette von Augen quer iiber den Discus des Fliigels, wahrend umgekehrt eine Reduction
dieser Flecke zu Punkten fiir manche Arten charakteristisch ist. Der Vorderfliigel fiihrt seltener véllig
ausgebildete Ozellen ; sie zeigen sich namentlich bei den gréssten, Morpho-ahnlichen Arten der Gattung
Stichophthalma in mehr oder weniger vollstandiger Reihe, sonst nur in einem einzelnen, apical gelegenen
Fleck und submarginalen Punkten.
Kopf und Koérper ziemlich klein und schwach, seltener etwas kraftiger entwickelt. Die Augen
sind gross, breit eiférmig gewélbt, nackt, selten behaart, die Palpen dreigliedrig, den Kopf in der Regel
etwas iiberragend, aber auch kiirzer als dieser; Schuppen- und Haarbekleidung dicht anliegend, diese
nur ventral an der Basis straffer abstehend und dorsal am distalen Teile des Mittelgliedes etwas schopf-
artig aufgerichtet. Basalfleck an der Innenseite des proximalen Gliedes in verschiedener Ausbildung,
meist klein, dicht mit kegel- oder fischgraétenahnlichen Gebilden in parallelen Reihen besetzt. Die Fiihler
sind von massiger Lange, gew6hnlich unter der Halfte des Vorderfliigels, diinn, distal nur schwach,
manchmal kaum merklich keulig oder spindelf6rmig verdickt, ventral mit drei Langsgraden, die zwei
furchenahnliche Vertiefungen abschliessen. In diesen mehr oder minder reichlich feine Harchen und
paarweis nahe der Basis der einzelnen Segmente stehende einzelne Borsten, der Schaft dorsal im iibrigen
meist nackt, selten leicht beschuppt (Aemona). Vorderbeine des Q verkiimmert, mit eingliedrigem,
die des O mit fiinfgliedrigem, bedorntem Tarsus. Vorderfliigel mit geschlossener, Hinterfliigel bei allen
Gattungen mit offener Zelle. Subcostalis des Vorderfliigels mit einer Ausnahme (Stichophthalma) finf-
astig, stets nur ein Ast proximal vom Zellende.
Ueber die Lebensweise berichten die Beobachter iibereinstimmend, dass die Amathusiinae echte
Waldtiere sind, welche sowohl den hohen Urwald, als auch dichtes Strauch- und Buschwerk, sowie
Bambusdickicht bewohnen, jedenfalls schattige Stellen bevorzugen, bei Tage versteckt der Ruhe pflegen
und erst bei Sonnenuntergang lebhaft werden. Was letzteren Punkt anlangt, so kann diese Lebensweise
nicht als allgemeine Regel gelten, denn die Arten gewisser Genera (Fawnis, Xanthotaenia) lieben es,
in unstetem, unberechenbarem Fluge, der eine Verfolgung sehr erschwert, im Walde, namentlich an
den Wasserlaufen entlang zu fliegen, und auch die Taenariden pflegen taumelnden Fluges, mit langen
schwerfalligen Fliigelschlagen einherzustreifen und nur da zu rasten, wo gefallene aromatische Friichte
(Bananen, Feigen etc.) ihren Geschmacksinn locken. Solche Leckerei ist es auch, welcher andere
Amathusiinae mit Eifer und Vorliebe nachgehen und in dieser Hinsicht bieten namentlich die Abfall-
statten in der Nahe menschlicher Behausungen einen besonderen Anziehungspunkt (Thaumantis) ; aber
auch am frisch ausfliessenden Saft der Zuckerpalme (Avenga sacchavifera Labill.) pflegen gewisse Ama-
thusia-Arten gern zu saugen (A. vivgata, nach Fruhstorfer) ; Zeuxidia- und Amathuxidia-Arten sind auch
beobachtet worden, wie sie an sonnigen Tagen, selbst in der schwersten Regenzeit, in den Mittagsstunden
auf Augenblicke aus dem Waldesdunkel im Fluge auftauchen, aber, kaum wahrgenommen, im Dickicht
wieder verschwinden. Der Flug der Amathussinae ist, ausser bei den in dieser Beziehung bereits erwahnten
Gattungen, im allgemeinen kraftig und rasch, aber nicht weit und anhaltend. Die Falter setzen sich mit
zusammengefalteten Fliigeln auf Bambus- und anderes Astwerk oder auf den Erdboden zwischen diirre
Blatter; m allen diesen Stellungen sind sie fiir das menschliche Auge fast unsichtbar. Augenscheinlich
fliegen sie ungern; von der Erde aufgescheucht flattern sie, den Boden fast streifend oder eilen kriechend
in das Unterholz oder sie fliegen aus ihren Ruhepliatzen im Astgewirr nur kurze Strecken bis zu einem
anderen Schlupfwinkel. Alle diese Eigenschaften erinnern ungemein an die Lebensweise der Brassolinae,
deren Gewohnheit, in der Dunkelheit‘'dem Licht inden Wohnhiusern u. s. w. nachzugehen, auch hier
von dem typischen Vertreter der Subfamilie, Amathusia phidippus, berichtet worden ist. — Etlichen
Arten wird nachgeriihmt, dass sie einen angenehmen Geruch verbreiten, der den Duftorganen des
Hinterfliigels entstrémt; so soll Amathuxidia platent wie Veilchen. Thauwmantis diores nach Vanille
6 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
riechen und Stichophtalma camadeva ein Fluidum absondern, dessen Geruch an frisches Zobelfell aus
dem Kiirschnerladen erinnert. (Nach Nicéville, Martin, Fruhstorfer, Hagen, Wood-Mason u. a.).
Die biologischen Verhialtnisse der Amathusiinae sind nur wenig bekannt. Nach Doherty (1890) ist
das Ei kugelig, durchscheinend, hart, breiter als hoch, mit glatter Oberflache (Thaumantis) oder gegittert
(Faunis). Genaueres weiss man eigentlich nur tiber die Entwickelungsgeschichte der einen, gemeinsten
Art, Amathusia phidippus L., die ttberall da verbreitet ist, wo die hauptsaichliche Futterpflanze der
Raupe, die Cocospalme (Cocos nucifera L.), kultiviert wird. Die Raupen kénnen bei massenhaftem Auftreten
erosse Verheerungen anrichten, sie verzehren die ippigen Blattwedel der Palme bis auf die Mittelrippe,
so dass die Baume den Eindruck hasslicher, abgestorbener Reisigbesen machen. Bei der Eiablage werden
von den Weibchen hohe, dltere Baume jiingeren vorgezogen; auch andere Palmenarten, so die afrika-
nische Oelpalme (? Elaeis guineensis L.) und die Palmyrapalme (Borassus flabelliformis L.) werden als Nah-
rungspflanzen nicht verschmaht. — Die Raupe ist in der Jugend weissgrau, der Kérper mit feiner, aus
zwei Ringen bestehender Dorsalzeichnung und dichter weisser Behaarung; in diesem Stadium leben die
Tiere gesellig, fressen des Nachts und verstecken sich bei Tage in dicht gedrangten Klumpen in den
Blattachseln. Nach der letzten Hautung trennen sie sich, sie sind dann unscheinbar graugriin mit
rotgrauer Behaarung und rétlichem Kopf. Dieser tragt zwei kurze, kolbige, stark héckerige Hérner und
ist dicht mit langen Borsten besetzt. Der K6rper ist cylindrisch, in der Mitte verdickt und endet in einer
miassig langen Schwanzgabel; auf dem 2. und 3. Segment, welche dunkeltarbig abgesetzt sind, stehen
lange, quer angeordnete, nach vorn gerichtete Borsten. (Nach Horsfield, Miiller, de Nicéville, Martin.)
Ueber Raupen anderer Amathusiinae sind nur unvollstandige Angaben publiziert, so soll die Larve von
Xanthotaenia der Behaarung entbehren (Doherty), Taenaris-Raupen sind auf niederen Palmenarten in
grésserer Anzahl, in gemeinschaftlichen Trupps von 5—6 Stiick an Blattern und am Stamme vereinigt,
gefunden worden (Ribbe); sie tragen auf dem schmalen, glanzend gelblichen, nach vorn etwas abgeplatteten
Kopf zwei kiirzere oder langere Zapfen, die proximal gelblich glanzend wie der Kopf, distal rotbraun
oder schwarz gefarbt und auf der Kuppe mit einer Krone von vier spitzen Zacken besetzt sind. Der
K6rper ist walzenférmig, nicht verdickt und ohne Analfortsatze, ebenso wie der Kopf mit straff nach
allen Seiten abstehenden feinen Haaren dicht bedeckt; dorsal weiss, lateral rot und dunkelbraun gestreift
(I. phorcas uvanus) oder von unscheinbarer gelblicher Farbe (T. catops), auch mit 2—3 schwarzen
Dorsallinien (T. wahnesi, catops, dimona). Die Haare des Kérpers stehen biischelartig angeordnet auf
den einzelnen Segmenten, auch die Bauchfiisse sind behaart; am kiirzesten ist die Behaarung bei den
Catops-Formen (Fruhstorfer). Raupen von T. gorgo leben in Colonieen von etwa 5o Stiick in Nestern an
der Unterseite von Pisangblattern (Musa), der K6érper ist rétlich mit ziemlich langer heller Behaarung,
auf dem Kopfe stehen zwei starke, stumpfe Horner, die in einen Kranz von 5—6 Stacheln auslaufen
(Hagen nach einem Bericht des Sammlers Wahnes).
Die Puppe der Amathusiinae ist hangend, soweit bekannt griin, langlich kahnférmig, der Kopf
in zwei midssig lange Hérner ausgezogen, mit scharfer Fliigel- und Riickenkante. Die Puppenruhe
wahrt 12—14 Tage (Martin, Ribbe).
UEBERSICHT DER GATTUNGEN
1. — Subcostalis des Vorderfliigels vierastig, alle Aeste frei . . . ©, Genus STICHOPHTHALMA, Felder.
Subcostalis fiinfastig . S18 Forseerait v reat Aa et ids aa
2. — Vorderey Medianast des Vorderfliigels stark, fast winklig
gekvimmt, der hinteven Radialis auffalhg genadheyvt . . . 2. ) 2 | ) es es se 5 Oe
Vorderey Medianast des Vorderfliigels flach gekriimmt, dey
iS)
(PUA: LEROMLOS THOS COOSHMAD GORHAM, a 5 6 6 6 618 0 6, 6.6 © 8 8 d 2 6 &
3. — Vorderer Medianast des Vorderfliigels mit einem nach vorn
gevichteten Adevansatz auf dem Buge . . . . . . . 4. Genus ZEuxipia, Hiibner.
FAM, NYMPHALID a
MonderemriVledtanastidesViovdenjiucelsonnerAdevansatzan uur wisi unl iene) Sts) eons ecu
4. — Sémiliche Subcostaliste in ganzsey Linge fret auslaufend. . . 1. Genus Amatuusia, Fabricius.
Die Subcostaldste stellenwetse unter sich oder mit der Costalis
verwachsen . ice Melis Wace heey mane la Go
5. — Subcostalast r mit Costalis verwachsen, S C 2 fret; Hinterfliigel
mit schwansartigem Analztpfel
On
No
RW: ISO . Genus AmatTHuxipia, Staudinger.
Subcostalast 1 mit Costalis und mit S C 2 stellenweise verwach-
sen. Hinterfliigel am Analwinkel kaum gelappt .
6. — Hintere Discocellularis hakenfirmig gebogen, konkav im die
Zelle einspringend .
Hintere Discocellularis S-formig gebogen, hinten im distaler
. Genus THaumantis, Hiibner.
Uo
NI
Richtung mehr oder weniger vortretend . . . . ESC eA are Ea Tue coh ee Tea onal day, teks
— Subcostaliste simtlich fret, Apex des Vorderfliigels Laer . 5, Genus TuHaurta, Moore.
Subcostalast r mit Costalis auf eine gewisse Entfernung verwach-
sen, Apex des Vorderfliigels spitz.
. — Mittlere Discocellularis etwa von der Hiilfte dey H DC. es Ce 2
vor dev Mitte zwischen Zellende und Apex abgezweigt. . . to. Genus XANTHOTANIA, Westwood.
Mittlere Discocellulavis viel kiirzer als die Hélfte der H DC.
SC2 weit hinter der Mitte zwischen Zellende und Apex
abgezweigt .
SJ
. Genus Armona, Hewitson.
on
“I
9g. — Hintere Discocellularis des Vor edeptaesl stark S- oe mig gebogen,
Fast vechtwinklig in den Bug des vorderen Medianastes etn-
miindend. V M des Hinterfliigels flach gekriimmt . Ss ee
Hintere Discocellulavis des Vorderfliigels flach geschweift, den
Bug des vorderen Medianastes spitzwinklig treffend. VM des
Hinterfliigels stark, fast winklig gekviimmt. . . . . . g. Genus Ta@naris, Hiibner.
(o2)
. Genus Faunts, Hiibner.
TRIBUS AMATHUSIIDI
Mittlere Discocellularis des Vorderfliigels gut ausgebildet, Hinterfliigel mit zipfel- oder schwanz-
artigem Endfortsatz oder sichtliche Neigung hierzu, beide Merkmale mit Ausnahme der 5. Gattung
(Thauria). Hinterrand des Vorderfliigels beim G mehr oder weniger konvex geschnitten, Tegumen
des Copulationsapparates ohne Lateralansdtze unter dem Uncus.
5 Gattungen :
1. GENUS AMATHUSIA, FABRICIUS
Amathusia. Fabricius, Syst. Gloss. M. S. publ.: Illiger in Mag. Ins. Vol. 6, p. 279 (spec. : A. phi-
dippus) (1807); Oken, Lehrb. Naturg. Vol. 3, Zool. p. 746 (err. typ. Amathrsia) (1815); Griffith,
Anim. Kingd. Vol. 15, p. 5go (1835); Blanchard in Hist. Nat. Ins. Vol. 3, p. 455 (1840); Double-
day. List Ins. Brit. Mus. Lep. p. 114 (part.) (1844); Westwood (u. Hewitson) (Doubleday M. S.)
in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. t. 54. f. 2 (A. phidippus) (1850);
Westwood, ibidem, Vol. 2, p. 326 (1851); Ménétriés, Cat. Acad. Imp. St.-Pétersb. Lép. Vol. 1,
p- 37 (1855); Horsfield u. Moore, Cat. Mus. E.-Ind. Comp. Vol. 1, p. 209 (1857); Herrich-
Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 18, p. 105 (1864), Vol. 19, p. 88 (1865); Butler, Cat.
diurn. Lep. Fab. p. 45 (part.) (1869); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 115 (1871); Scudder in Proc.
8 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Amer. Acad. Sc. Vol. ro, p. 108 n° 54 (1875); Distant, Rhop. Malay. p. 70 (1882); Marshall u.
Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 289 (part.) (1883); Haase in Corr. Bl. Ver. Regensb.
Vol. 1, p. 102 (1886), p. 307 (1888); Semper, Schmett. Philipp. p. 70 (1887); Staudinger (u. Schatz),
Exot. Schmett. Vol. 1, p. 188 (1887); Schatz (Staudinger u.), ibidem, Vol. 2, p. 185 (1888);
Kirby, Handb. Lep. Vol. 1, p. 198 (1894); Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 178 (1895); Reuter in
Acta Soc. Sc. Fenn. Vol. 22, p. tog (1896); Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8,
p. 258 (part.); Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 74 (1899), Vol. 17,
p. 156 (1904); Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc, n. 41, p. 107 (1904); Bingham in
Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 187 (part.) (1905).
Moera. Hiibner, Verz. Schmett. p. 51 (part.) (spec. : M. phidippus) (1816).
Morpho. Latreille, Enc. Méth. Zool. Vol. 9, p. 11 (part.); Godart (Latreille u.) ibidem, p. 435 (part.);
Guérin-Méneville in Cuvier, Icon. Regne Anim. Ins. Vol. 3, p. 487 (1829-38).
Mitocerus. Billberg, Enum. Ins. p. 79 (1820).
Pseudamathusia. Honrath in Corr. Bl. Iris, Vol. 1, p. gi (spec. : P. vebber = virgata) (1886); Stau-
dinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 188 (Subgen.) (1887); Moore, Lep. Ind. Vol. 2,
p- 182 (1895); Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. Vol. 12, p. 77 (1899), Vol. 17. p. 157
(Subgen.) (1904); Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. n. 41, p. 107 (Sectio) (1904).
Thoraessa. Boisduval, M.S.
Allgemeine Charaktere. — Kopf ziemlich klein, Augen breit eirund gewélbt, nackt. Stirn
buschig behaart. Palpen gross, aussen dicht beschuppt und behaart, an der Innenseite spiarlicher, die
Behaarung leicht gescheitelt. Basalglied kurz, stark aufwarts gekriimmt, ventral mit langeren, straff
abstehenden Haaren bekleidet; Basalfleck klein, etwa ein Drittel der Innenfliche einnehmend, hellbraun
chitinisiert. Mittelglied viel linger, der Stirn anliegend, dorsal am distalen Ende mit schopfartig
abstehendem Haarbiischel. Endglied kurz kegelférmig, zugespitzt, etwas nach vorn geneigt und gut
abgesetzt. Antennen diinn, etwas unter halber Fliigellange, distal ein wenig spindelférmig verdickt,
Endglied spitz kegelférmig, Schaft unbeschuppt. Langsfurchen der Ventralseite gut ausgebildet, die
Harchen in den einzelnen Gruben spiarlich und ungleichmassig verteilt. Thorax klein, Halskragen und
hinterer Teil wollig, Schulterdecken linger, Riicken kiirzer behaart. Abdomen etwa von halber Linge
des Hinterfliigels, dicht behaart, an den letzten 5 Segmentringen ventro-lateral je ein nach unten
gerichteter Haarbiischel, der letzte kiirzer als die ttbrigen. Vorderfliigel kurz und breit, rechtwinklig
dreieckig, Vorderrand gekriimmt, Apex ziemlich spitz, Distalrand fast gerade, leicht wellig, Hinterwinkel
sanft abgerundet rechtwinklig, Hinterrand beim of mehr oder weniger stark konvex, beim Q fast gerade.
Costalis tiber zwei Drittel der Lange des Vorderrandes. Subcostalis fiinfastig, alle Aeste frei auslaufend,
SC 1 jedoch manchmal der C ziemlich dicht anliegend; er entspringt
SC) wee 34 etwa auf 3/4 der Lange der vorderen Zellwand vor derem Ende. SC 2 in
: * betrichtlicher Entfernung, etwa der Miindung der Costalis gegeniiber,
abgezweigt, in kurzem Abstande gefolgt von S C 3. Diese 3 Adern in
annahernd gleichem Abstande unter sich und mit der Costalis in schra-
ger Richtung den Distalrand erreichend, am Ende leicht gebogen,
/ oder aber S C3 in einzelnen Fallen dem 2. Ast sehr nahe gertickt,
ee mit ihm aus demselben Punkt auslaufend oder sogar auf kurzem
gemeinschaftlichem Stiele mit diesem sitzend (Fig. 1). S C4 und 5
bilden eine massig lange Gabel, ersterer in den Apex, dieser kurz hinter ihm in den Distalrand
miindend. Zelle breit, kurz, unter halber Fliigellange. VDC nur sehr kurz, da V R fast unmittelbar
an der vorderen Zellecke entspringt. M D C steil schrag nach hinten gestellt, H D C in scharfem
Bogen distalwarts gerichtet dann gestreckt in spitzem Winkel die Mediana erreichend. Die beiden
FAM. NYMPHALIDZ 9
Zellecken in fast gleichem Abstande von der Fliigelwurzel, die hintere nur unbedeutend gegen den
Distalrand vortretend. Die Radiales in flacher Kriimmung und beinahe parallel verlaufend. VM
gewdhnlich zuerst in der Richtung des Hauptstranges der Mediana weiterlaufend, dann in fast
stumpfem Winkel distalwdrts gerichtet. In einem Falle (A. wrgata) trifft H DC den Bug der Mediana,
so dass V M sich von dort sogleich bogenférmig gegen den Distalrand wendet. Diese Ausnahme
jedoch nur beim go (Schatz). MM etwas stirker gekriimmt als H M und in etwas grésserem
Abstande von dieser wie von VM. S M ander Wurzel etwas verdickt, der Kriimmung des Hinterrandes
folgend oder fast gerade. Nahe der Wurzel der Mediana ein kleiner Aderansatz, dessen Fortsetzung
durch eine Faltenader angedeutet ist. Ebenso auf dem Bug des vorderen Medianastes, sowohl auf
Vorder- als Hinterfliigel, eine querlaufende schmale Aufbeulung der Membran, durch welche die Lage
des Aderansatzes bei der nahe verwandten Gattung Zewatdia angedeutet ist. — Hinterfltigel dreieckig,
die Spitze in Gestalt eines breit schwanz- oder zipfelartigen Analfortsatzes nach hinten gerichtet. Costa
flach gekriimmt, Apex ziemlich deutlich geeckt, Distalrand fast gerade, wellig; Hinterwinkel stumpf
abgesetzt, Hinterrand leicht geschweift, vorn etwas gelappt. Praecostalis einfach, distal leicht wurzel-
warts gekriimmt. Costalis stark gekriimmt, in den distalen Teil des Vorderrandes auslaufend. S C flacher
gebogen, genau in den Apical-Winkel mtindend, V DC nahe der Fliigelwurzel von SC abgezweigt,
schrag distalwarts gestellt, M DC als solche nicht vorhanden, sondern in leichter Krimmung in H R
iibergehend. V R und H R bilden eine lange, leicht nach hinten gekriimmte Gabel, H D C fehlt. Die
ubrigen Adern in normalem Verlauf, H M und SM treffen bei der Miindung beiderseits seitlich den
lappenartigen Analzipfel. Die mannlichen Geschlechtsmerkmale verschieden. Meist eine kleine blanke
Reibeflache unterseits des Vorderfliigels nacht der Basis desselben. Hinterfliigel auf der Oberseite etwa
an der Mitte der S M an deren Distalseite mit einer taschenartigen Falte, in welcher ein mehr oder
weniger stark entwickelter strahlig ausstreckbarer Haarpinsel ruht; dieser fehlt auch mitunter, An der
Proximalseite derselben Ader, etwas weiter nach hinten, meist noch ein kleiner, offen legender
Haarbiischel. Bei zwei Arten (A. virgata, A. masina) zwischen C und S C des Hinterfliigels auf blanker
Reibeflache ein rundlicher, kurz pliischartig beschuppter Duftfleck in flacher, pfannenartiger Vertiefung
der Membran.
Grosse Falter von diister brauner Farbe, auf der Oberseite mit mehr oder weniger ausgepragten,
meist verwaschenen hellbraunen oder rétlichbraunen Bindenzeichnungen oder einfarbig, unten dagegen
mit meist scharf abgesetzter brauner und weisslicher Quersteifung.
Schema des Fliigelgedders : Taf. |, Fig. |.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Arten dieser Gattung leben in Hinterindien,
nérdlich bis Burma, auf den Andamanen und Nikobaren, Sunda-Inseln und Philippinen. Eine Fundort-
Angabe, Inseln der Torres-Strasse (Westwood), erscheint unglaubhaft, als dstliche Grenze der Verbrei-
tung ist mit Sicherheit Celebes und Lombok bekannt.
IO LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Sectio |. ATEGANA
Hinterfliigel beim o& im Basalwinkel zwischen Costalis und Subcostalis ohne
pfannenartige Vertiefung in der Membran.
Cohors |. PHIDIPPIFORMES
Hinterfliigel beim G mit 2 Haarpinseln jederseits der Submediana, von denen dev distal liegende in dey Ruhe in einer
taschenartigen Falte verborgen ist.
1. Amathusia phidippus Linné.
a. Amathusia phidippus phidippus Linné.
— — Seba, Thesaurus, Vol. 4, t. 5 f. 5 (1765).
Papilio phidippus, Linné, Cent. Ins. rar. Resp. B. Johannson (Amoen. Acad. Vol. 6) p. 402 (1763).
Papilio phidippus, Linné, Syst. Nat. (12), Vol. 1 2, p. 752 (1767).
Papilio phidippus, Cramer, Pap. Exot. Vol. 1, p. 108, t. 69 f. A, B (forma pluv. temp. ?) (1779
Amathusia phidippus, Fabricius, Syst. Gloss. M.S., Illiger in Mag. Ins. Vol. 6, p. 279 (1807)
Amathusia (errat. typ. Amathrsia) phidippus, Oken, Lehrb. Naturg. Vol. 3, Zool. p. 746 (1813).
Morpho phidippus, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 439 (1819).
Amathusia phidippus, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep. Vol. 1. p. 114 (1844).
Amathusia phidippus, Westwood (u. Hewitson) in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. t. 54*
f. 2 (1849); Vol. 2, p. 327 (1851)
Amathusia phidippus, Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. t. 37 f. 1 (1853).
Amathusia phidippus, Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp. Vol. 1, p. 209, t. 6 f. 4, 4a (Biol.) (1857).
Amathusta phidippus, Druce in Proc. Zool. Soc Lond. 1873 p. 340; 1874 p. 104.
Amathusia phidippus, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm, Ceyl. Vol. 1, p. 289 (except. descr. larvae) (1883).
Amathusia phidippus, W. Muller in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 611 (Biol ) (1886).
Amathusia phidippus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 187 (part.), t. 63 (1887).
Amathusia phidippus, Moore, Lep. ind. Vol. 2, p. 179 (part.), t. 146 f. 1, 1a-c (G, 2, Biol.) (1895).
Amathusia phidippus, Nicéville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 64 (2) p. 393 (1896).
Amathusia phidippus phidippus, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 17, p. 156 (1904).
Amathusia phidippus, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. n® 41. p. 107 (1904).
Amathusia phidippus, Bingham in Fauna Brit. India, Butt. Vol. 1, p. 187 (part.) (1905).
Moera phidippe, Hiibner, Verz. Schmett. p. 51, n° 477 (1816).
Thoraessa phidippus, Boisduval M.S.
Java, Lombok, Borneo, Nattina-Inseln, Malayische Halbinsel, Siam, Burma.
)
a. Forma taenia Fruhstorfer.
Amathusia taenia, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 14, p. 3 (1899); Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol 12, p.73 (1899).
Amathusia phidippus (errat. typ. phiduppus) form. temp. ¢aenta, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris),
Vol. 17, p. 156 (1904).
Java.
3, Forma diluta Fruhstorfer.
Amathusia phidippus dilutus, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 17, p. 152, 156 (1904) (1).
Borneo.
(1) Diese sowie die folgenden 3 Formen der Art als Subspecies aufzufassen, lasst sich mit den Tatsachen nicht vereinbaren. Die recht unbe-
stimmten Trennungsmerkmale derselben greifen teilweise derart in einander, dass Grenzen nicht gezogen werden kénnen und selbst da, wo eine lokale
Trennung durch natiirliche Isolierung der betreffenden Heimatsinseln oder Liinderstriche méglich ware, erscheint neben der gedachten, abweichenden
immer wieder die typische Form in mehr oder minder charakteristisch ausgepragter Gestalt, so dass auch fiihere Autoren (Staudinger, Martin, Semper,
Moore, u. a.) eine lokalisierte Rassenbildung in Abrede stellten. Wenngleich diese Ansicht durch Annahme der folgenden Subspecies hier eine etwas
erweiterte Aufnahme erfiihrt, so soll doch besonders betont werden, dass dies mit diusserster Zuruckhaltung geschieht und die Berechtigung dieser Formen
als systematische Einheiten immerhin als recht zweifelhaft angesehen wird, mit alleiniger Ausnahme der Nias-Form (A. 44. zzasana Kruhst.), welche
vermége der Gestalt-Veranderung der Medianbinden der Unterseite tatsichlich eine veranderte Entwickelungsrichtung angenommen zu haben scheint,
wengleich auch hier ahnliche Stiicke von Sumatra bekannt sind. Die anderen Formen sind meist Mischformen. Am wenigsten haltbar ist die von Borneo
aufgestellte Subspecies d#lvta (dilztus Fruhst.). Vorliegendes Material von S. Borneo lasst erkennen, dass der G zuweilen eine sehr schén hervortre-
tende Submarginalbinde des Vorderfliigels und scharf kontrastrierte Bindenzeichnung der Unterseite fihrt, also gerade das Gegenteil von dem, was die
Diagnose sagt. — A. ph. binghami f. temp. pluv. Fruhstorfer, eine Form die von A. gh. fridericé Fruhstorfer nicht zu trennen ist, kommt in ganz
charakteristisch ausgeprigten Stiicken mit etwas stumpferer Spitze des Vorderfliigels (anscheinend individuell) in N. O. Sumatra (coll. Stichel) vor und
wird von Moore (l. c.) aus Pegu abgebildet, waihrend andererseits von Burma wiederum ganz typische Stiicke von shzdippus reproduziert sind. Von
Palawan meldet Staudinger (Deutsche Ent. Zeit. (Iris), Vol. 2, p. 4o) Stiicke ohne besondere Auszeichnung neben solchen mit grell hervortretenden
Binden der Unterseite. Stiicke aus Celebes, die im allgemeinen durch eine etwas breitere Form des Hinterfliigels und kiirzere Analzipfel ausgezeichnet zu
sein scheinen, keineswegs aber kleiner als Java-Tiere sind, wie in der Beschreibung gesagt, wiederholen sich in ganz ahnlicher Gestalt und Farbe auf
Sumatra, und bei Tieren der Philippinen-Rasse kann Semper (I. c.), Verschiedenheiten gegen solche anderer Herkunft nicht erkennen. Starke Verschma-
lerung und Verkiirzung der Medianbinden, wie sie die Diagnose von A. kimi Rober ausspricht, auch Vermehrung der Ozellen, deren Zahl sonst sehr
beharrlich ist, wie is bei 4. 24. andamanensis Fruhst. der Fall ist, mégen eher zur Begriindung einer Unterart dienen, jedoch auch hier kénnen Falle
individueller A banderung vorliegen.
FAM. NYMPHALID II
+. Forma binghami Fruhstorfer.
Amathusia phidippus binghami, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 17, p. 154 (part.) (form. temp. siccit.)
(1904).
Amathusia phidippus, Distant, Rhop. Malay., p. 70, t. 6 f. 6, 7 (1882).
Amathusia phidippus, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 179 (part.) (als perakana) (1895).
Amathusia phidippus perakana, Fruhstorfer (non Honrath) in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 75 (part.)
(1899).
Perak, Mergui, Billiton, Bangka (?).
oO)
- Forma friderici Fruhstorfer.
Amathusia phidippus fridertci, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 17, p. 153, 156 (1904).
Amathusia phidippus var., Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 181, t. 147 f. 1 (1895).
Amathusia phidippus perakana, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 75 (part.) (1899).
Amathusia phidippus binghami, forma temp. pluv., Fruhstorfer, ibidem, Vol. 17, p. 154, 156 (1904).
Pegu, Tenasserim, Penang, Perak, N. Sumatra.
=. Forma adustata Fruhstorfer.
Amathusia phidippus adustatus, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 17, p. 152, 156 (1904).
Siam.
+. Forma coriotincta Stichel, nov. form. (1).
Natuna Inseln.
». Amathusia phidippus andamanensis Fruhstorfer.
Amathusia taenia andamanensts, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 76 (1899).
Amathusia phidippus andamanensis, Fruhstorfer, ibidem, Vol. 17, p. 156 (1904).
Amathusia phidippus, Moore in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 583 (1877).
Amathusia phidippus (Andaman form), Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 181, t. 147 f. 2 (Q) (1895).
Adamanen. Nikobaren (?).
©. Amathusia phidippus niasana Fruhstorfer.
Amathusia phidippus niasana, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 14, p. 2 (1899).
Amathusia phidippus niasana, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 71, 75 (1899).
Amathusta phidippus, Kheil, Rhop. Nias, p. 20 (1884).
Nias, Mentawej-Inseln.
d. Amathusia phidippus celebensis Fruhstorfer.
Amathusia phidippus celebensis, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 14, p. 2 (1899).
Amathusia phidippus celebensis, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 72, 76 (1899).
Amathusia phidippus, Hopfter in Ent. Zeit. Stett. Vol. 35, p. 38 (1874).
Amatiusia phidippus, Snellen in Tijdschr. Ent. Vol. 21, p. 11 (1878).
Amathusia phidippus, Pagenstecher in Abh. Senckenb. Ges. Vol. 23, p. 404 (1897).
Amathusia virgata, Staudinger (u. Schatz) (non Butler), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 188 (1887).
Amathusia phidippus var. virgatus (!), Rothschild in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 5, p. 434 (1892).
Celebes.
¢. Amathusia phidippus kuhni Rober (subsp. dubia).
Amathusia kithni, Rober in Ent. Nachr. Vol. 26, p. 201 (1900).
Amathusia phidippus kitint, Frahstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 17, p. 156 (1904).
Bangkei.
jf. Amathsia phidippus pollicaris Butler (subsp. dubia),
Amathusia pollicaris, Batler in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 485 (1870).
Amathusta pollicaris (? = phidippus), Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 187 (1887).
Amathusia pollicaris, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 182 (1895)
Amathusia phidippus pollicaris, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 75 (1899); Vol. 17,
Pp- 156 (1904).
Luzon, Mindoro, Mindanao und anliegende Inseln.
(1) Amathusia phidipuus ph., orma coriotincta. — Alis omnibus subtus colore fundamentali coriario. — Vermutlich eine dem Fluggebiet
eigentamliche Jahreszeitform, deren Grundfarbe auf der Unterseite einen braunlichen, lederartigen Ton hat, auch oberseits einen Schein heller ist als die
Hauptform, aber neben Stiicken mit hellerer Grundfarbe der Unterseite und dunkler Oberseite, welche von der Hauptform nicht zu trennen sind,
vorkommt. 1 G ab. (1 ¢ typ.) coll. Stichel, Natuna Inseln.
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
g. Amathusia phidippus palawana Fruhstorfer (subsp. dubia). &
Amathusia phidippus palawanus, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 17, p. 154, 156 (1904).
Amathusia phidippus, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2, p. 40 (1880).
Palawan.
2. Amathusia schonbergi Honrath.
a. Amathusia schoénbergi schoénbergi Honrath.
Amathusia schénbergi, Honrath in Berl. Ent. Zeit. Vol. 31, p. 347, t. 6, f. 1 (1887).
Amathusia schoenbergt, Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 259 (1896).
Amathusia schénbergt, Fruhstorfer, ibidem, Vol. 12, p. 76 (part.) (1899); Vol. 17, p. 157 (1904).
Perak, Sumatra.
%. forma ochraceofusea, Honrath (? forma sicc.).
Amathusia ochraceofusca, Honrath in Berl. Ent. Zeit. Vol. 31, p. 348 (1887).
Amathusia ochraceofusca (phidippus forma ?), Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 260 (1896).
Amathusia ochraceofusca, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 17, p. 155, 157 (1904).
? Amathusia ochreofusca, Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41, p. 107 (1904).
Perak, Sumatra, Borneo (?).
b. Amathusia sch6nbergi borneensis Fruhstorfer (nom. vix conserv.).
Amathusia schénbergi borneensis, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 72, 76 (1899); Vol. 17,
p. 157 (1904).
Amathusia schénbergi borneensts, Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41, p. 107 (1904).
S.-Ost-Borneo.
Cohors Il. PERAKANIFORMES
ot ohne Haarpinsel in der Falte an der Submediana des Hinterfliigels.
3. Amathusia perakana Honrath.
a. Amathusia perakana perakana Honrath.
Amathusia phidippus var, pevakana, Honrath in Berl. Ent. Zeit. Vol. 31, p. 348, t. 6, f. 2 (1887).
Amathusia perakana perakana, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol 17, p. 156 (154) (1904).
Amathusia perakana natuna, Fruhstorfer, ibidem, Vol. 17, p. 153 (1904).
Malayische Halbinsel : Perak. Natuna Inseln.
b. Amathusia perakana staudingeri Rober (nom. vix conserv.).
Amathusia staudingert, R6ber in Ent. Nachr. Vol. 21, p. 202 (1900).
Amathusia perakana staudingeryi, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 17, p. 156 (1904).
Stid-Borneo.
Sectio Il. SYNTEGANA
Hinterfliigel beim co im Basal-Winkel zwischen Costalis und Subcostalis
mit einer pfannenartigen Vertiefung in der Membran.
4. Amathusia virgata Butler. — Taf. 2, Fig. 1, ot.
Amathusia virgata, Butler in Trans, Ent. Soc. Lond. p. 486 (1870).
Pseudamathusia virgata, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 182 (1895).
Pseudamathusia virgata, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 77 (1899); Vol. 17, p. 157 (1904).
Pseudamathusia vibbet, Honrath in Corr. Bl. Iris, Vol. 1, p. 91 (1886).
Amathusia (Pseudamathusia) ribbei, Haase in Corr. Bl. Iris, Vol. 1, p. 103, 308 (1886, 1888).
Amathusia (Pseudamathusia) vibbet, Staudinger (u. Schatz). Exot. Schmett. Vol. 1, p. 187, 188 (1887).
Celebes.
5. Amathusia masina Fruhstorfer.
Pseudamathusia masina, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 17, p. 155 (1904).
Pseudamathusia ochreofusca, Fruhstorfer, ibidem, Vol. 12, p. 77 (1899).
Siid-Ost-Borneo, Sumatra.
FAM. NYMPHALIDA® 13
SPECIES DUBIA
6. Amathusia patalena Westwood.
Amathusia patalena, Westwood, Cab. Orient. Ent. p. 20, t. 19, f. 3 (1848).
Ame ide idippus var. patalena, Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp. Vol. 1, p. 210 (1857).
Ami phidippus patalena, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 72, 74 (1899).
Pseudamathusia patalana, Fruhstorfer, ibidem, Vol. 17, p. 157 (1904).
? Inseln in der Gegend der Torres-Strasse.
2. GENUS AMATHUXIDIA, STAUDINGER
Amathuxidia. Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 188 (Subgen.) (1887); Haase in :
Corr. Bl. Iris Vol. 1, p. 308 (1888) ; Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 176 (1895) ; Martin in Deutsche
Ent. Zeit. Lep. (Ins) Vol. 8, p. 260 (1896); Nicéville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal.
Vol. 64 (2), p. 393 (1896) ; Fruhstorfer in Berlin. Ent. Zeit. Vol. 41, p. 301 (1897) u. Vol. 49,
Pp. Ig0 (1904).
Amathusia. Doubleday in Ann. Nat. Hist. Vol. 19, p. 175 (spec. A. amythaow) (1847); Westwood,
Cab. Orient. Ent. p. 39 (spec. ead.) (1848); Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep. App. p. 29
(spec. ead.) (1848); Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2
p- 327 (spec. ead.) (1851); Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp. Vol. 1, p. 210
(spec. ead.) (1857) ; Herrich-Schiaffer in Corr. Bl. Ver. Regensburg Vol. 19, p. 88 (spec. ead.)
(1865); C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 461 (spec. A. pylaon, A. porthaon,
A. portheus) (1866); Butler in Ent. Monthly Mag. Vol. 6, p. 55 (spec. A. ottomana, A. westwoodi =
amythaon) (1869); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 115 (part.) (1871); Marshall u. Nicéville, Butt. Ind.
Burm. Ceyl. Vol. 2 (2), p. 291 (part.) (1883); Honrath in Berlin. Ent. Zeit. Vol. 28, p. 206 (spec.
A. dilucida) (1884) ; Distant, Rhop. Malay. p. 423 (part.) (1886); Haase in Corr. BI. Iris Vol. 1,
p- 102(part.) (spec. A. dilucida) (1886); Semper, Schmett. Philipp. p. 70 (part.) (spec. A. porthaon =
philippina (1887); Elwes(u. Méller) in Trans. Ent. Soc. Lond. 1888 p. 334 (spec. A. portheus =
forthaon) ; Doherty in Journ. Asiat. Soc. Bengal. Vol. 60 (2), p. 25 (spec. A. amythaon v. insularts)
(1891); Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41, p. 107 (1904); Bingham in Fauna
Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 187 (part.) (spec. A. amythaon) (1905).
Zeuxamathusia. Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 188 (Subgen.) (1887); Rothschild
in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 5, p. 434 (spec. Z. plateni) (1892); Fruhstorfer in Berl.
Ent. Zeit. Vol. 43,S. B. p. (4) (spec. ead.) (1898) u. Vol. 44 p. 59 (spec. Z. platent suprema) (1899).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, Augen oval gewolbt, nackt; Stirn kurz behaart. Palpen
aussen dicht beschuppt und behaart, an der Innenseite spirlicher, die Beschuppung deutlich gescheitelt.
Basalglied kurz, stark gekriimmt, ventral mit einem dichten und starken Busch straft abstehender Haare;
Basalfleck klein, in ganzer Ausdehnung von fein kegelférmigen Gebilden dicht und reihenweise
bestanden, bradunlich chitinisiert, die Rander von einzeln liegenden Schuppen etwas iiberragt.
Mittelglied etwa von dreifacher Lange, fast ganz dem Kopf anliegend, distal mit einem Biischel
schopiartig abstehender Haare. Endglied kurz, glatt, zapfenartig, spitz, den Kopf bedeutend tiberragend.
Antennen diinn, distal allmahlich etwas verdickt, die Endglieder spitzig verjiingt, etwa von halber
Fliigellange, nackt, ventral die Furchen und Lingsgrade bis zur Spitze gut ausgebildet, in den Vertie-
fungen, unregelmassig verteilt, feine Harchen und paarweise angeordnete einzelne Borstenhaare. Thorax
ziemlich kraftig, vorn und hinten wollig, in der Mitte kurz und glatt, die Schulterdecken lang biischelig
behaart. Abdomen schlank, ungefahr von halber Lange des Hinterfliigels, kurz, am Ende etwas langer
behaart. Vorderfliigel etwa rechtwinklig dreieckig. Vorderrand stark gekriimmt, Apex eckig abgesetzt,
Distalrand gerade, Hinterwinkel abgerundet rechtwinklig, Hinterrand etwas gelappt, an der F liigelbasis
14 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
stark einspringend, beim Q flacher und weniger gelappt. Costalis proximal ziemlich stark aufgetrieben,
im letzten Drittel des Vorderrandes auslaufend. Subcostalis fiinfastig, SC 1 am letzten Viertel der vorde-
ren Zellwand abgezweigt, in der Regel mit C auf eine kleine Strecke vor der Miindung letzterer verwach-
sen oder derselben dort doch ganz eng anliegend; die iibrigen Aeste frei, S C 2-4 in kurzem Abstand
unter sich weit jenseits der vorderen Zellecke abgezweigt und in paralleler Richtung schrég in den
Vorderrand, Ast 4 in den Apex miindend. S C 4 bildet mit S C 5 eine kurze Gabel und letzterer erreicht
den Distalrand kurz hinter dem Apex. Zelle breit und kurz, unter halber Linge des Fliigels. V DC sehr
kurz, fast ganz verkiimmert, M DC gerade, in steil schrager Richtung nach hinten gestellt, H D C
bedeutend langer, in kurzem Bogen in distaler Richtung laufend und die Mediana in spitzem Winkel
treffend ; hierdurch die hintere Zellecke etwas vortretend. Die Medianaste etwa in gleichem Abstand
voneinander, H M und M M ziemlich gerade gestreckt, V M scharf winklig nach aussen gekriimmt.
S M etwas geschweift. — MHinterfliigel breit, im . Thaumantis diores hainana Crowley.
Nandoges hainana, Crowley in Proc, Zool. Soc Lond. 1900, p. 505.
Hainan.
B. Haarbiischel des Hinterfliigels mit blanker Grenzzone.
2. Thaumantis lucipor Westwood.
Thaumantis lucipor, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn, Lep. Vol. 2, p. 337, Fuss-
note (1851).
Thaumantis luctpor, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 173, t. 19 f. 1, 1a, 2, 2a (1858).
Thaumantis lucipor, Distant, Rhop. Malay, p. 77, t. 9 f. 8, 9 (1882).
Thaumantis lucipor, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203 (1887).
Thaumantts lucipor, Martin in Berl. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 6 (1890).
Kringana luctpor, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 185 (1895).
Thaumantis (Kringana) lucipor, Nicéville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 64 (2), p. 395 (1896).
Thaumantis lucipor, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 190 (1905).
Thaumanis lucipor, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. n° 41, p. 108 (1904).
Morpho klugius, Zinken-Sommer in Nova Acta Acad. Leop. Vol.15, p. 165 (part.: 3), t.15 f.11 (non f. 12, 13) (1833) (1)
Thaumantis klugius, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 337 (1851).
Morpho klugius, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 172 (1858).
Thaumantis klugius, Hagen in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen. (2), Vol. 7, p. 200 (1890).
Kringana klugius, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 185 (1895).
Java, Borneo, Sumatra, Malayische Halbinsel, Bintang (Mus, Berolin.).
3. Thaumantis odana Godart.
a, Thaumantis odana odana Godart.
Morpho odana, Godart (Latreille u.) in Enc. meth. Zool. Vol. 9, p. 445, n° 16 (1819).
Morpho odana, Horsfield, Descr. Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp. t. 6 f. 5, 5a (1829).
Thaumantis odana, Boisduval, Spec. Gén. Lép. Vol. 1, t. 12 (8 B) f. 1 (1836).
Thaumantis odana, Distant, Rhop. Malay. p. 427, t. 36 f. 3 (1886).
Thaumantis odana, Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 258 (1896).
Thaumantis odana, Kirby in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 47 (1901).
Thaumantis oda, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 274 f. 3, 4 (1822-1826).
Morpho klugius, Zinken-Sommer in Nova Acta Acad. Leop Vol. 15. p. 165 (part.: 2), t. 15 f. 12, 13 (non f. 11) (1831).
Java, Sumatra, Nias, Malayische Halbinsel (2).
b Thaumantis odana cyclops Rober.
Thaumantis odana var. cyclops, Rober in Soc. Ent. Vol. 19, p. 105 (1904).
Thaumantis odana, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. (part.), Vol. 1, p. 203, t. 65 (1887).
Thaumantis odana, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. n® 41, p. 108 (1904).
Stid-Borneo.
Sectio Il. EPIXANTHI
Oberseite mit geringem oder ganz ohne blauen Schimmer. Hinterfliigel in der
Costalgegend mit zwei auf Duftschuppen-Pfannen gelegenen und von einer
blanken Grenzzone umgebenen Haarbiischen.
4. Thaumantis noureddin Westwood.
a. Thaumantis noureddin nouredin Westwood.
Thaumantis noureddin, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 337, Fuss-
note (1851).
(x) M4. klugius Zink.-Somm. (1831), ist partiell synonym (Q) mit AZ. odona God. (1819) und als bedingtes Homonym zu Gunsten des fur den
unvereinigten Teil der in Betracht kommenden Einheit aufgestellten Namens 7%. lucipor (=M. klugius G) zu verwerfen. (Artikel 36 der Internationalen
Nomenklaturregelen, Paris, 1905.)
(2) Es muss unentschieden bleiben, ob die Formen von Sumatra, Nias und der Malayischen Halbinsel mit der typischen Unterart oder mit
T.o. cyclops vereinigt werden miissen, oder gar besondere Lokalformen reprasentieren. In der Literatur fehlen hieriiber bislang genauere Angaben und die
vorhandenen Abbildungen erlauben es nicht, einen sicheren Schluss zu ziehen. — Zu vergl. Nachtrag, Seite 5o.
FAM. NYMPHALIDA® 19
Thaumantts noureddin, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 175, t. 20, f. 1, ra, 2, 2a (1858).
Thaumantis noureddin, Distant, Rhop. Malay. p. 78, t.6 f. 3 (), t. 9 f. 7 (2) (1882).
Thaumantis noureddin, Hagen in Berl. Ent. Zeit. Vol. 37, p. 144 (1892).
Kringana noureddin, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 185 (1895).
Thaumantis noureddin, Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 257 (1896).
Thaumantis (Kringana) noureddin, Nicévilleu. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 64 (2), p. 395 (1896).
Malayische Halb-Insel, Sumatra, Bangka.
6. Thaumantis noureddin sultanus noy. subsp. (1). — Taf. 3, Fig. 4, ©.
Thaumantis noureddin, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. n° 41, p. 108 (1904).
Sud-Borneo.
4. GENUS ZEUXIDIA, HUBNER
Zeuxidia. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 270 (spec. Z. luxeriz) (1822-26); Doubleday, List Ins.
Brit. Mus. Lep. Vol. 1, p. 114 (1844); Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen.
diurn. Lep., Vol. 2, p. 327 (1851); Herrich-Schaffer, in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 18,
p- 105 (1804), Vol. 19, p. 88 (1865); Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, tab. Zeuxidia & Aemona
(1868); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 115 (1871); Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 292
(1875); Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 285 (1882); Distant, Rhop.
Malay. p. 72 (1882); Haase in Corr. Bl. Iris, Vol. 1, p. 103, 309 (1886, 1888); Semper, Schmett.
Philipp. Vol. 1, p. 72 (1887) ; Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 188 (1887); Schatz
(Staudinger u.), ibidem, Vol. 2, p. 186 (1889); Hagen in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen. (2).
Vol. 7, p. 200 (1890): Martin in Berl. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 8 (1890); Moore, Lep. Ind. Vol. 2,
p. 173 (1893); Kirby, Handb. Lep. p. 198 (1894); Martin in Deutsche Ent Zeit. J.ep. (Iris), Vol.8,
p. 261 ‘1896); Kirbyin Hiibneru. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 46 (1901); Shelford in
Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41, p. 106 (1g04); Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1,
p- 186 (1905).
Meera (part.). Hiibner, Verz. Schmett. p. 51 (spec. : M. auvelius = aurelia).
Morpho (part.). Latreille, Enc. méth. Zool. Vol.g,p. 11 (1819); Godart (Latreilleu.), ibidem, p.435(1819).
Amathusia (part.). Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 45 (spec. : A. aurelius) (1869).
Amaxidia. Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 188 (Subgen.) (1887); Haase in Corr. BI. Ivis, Vol. 1,
p- 308 (1888); Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 178 (1893) ; Shelford in Journ. Straits Branch. Asiatic
Soc. n° 41, p. 107 (1904).
Zeuxaltis. Butler in Ann. Nat. Hist. Vol. 19, p. 469 (Subgen.) (1897); Shelford in Journ. Straits
Branch. Asiatic Soc. n° 41, p.106 (als Sectio) (spec. : Z. pryeri—= Zeuxidia doubledait, monstr.) (1904).
Aglaura. Boisduval, M. S.
Allgemeine Charaktere. — Kopf missig gross. Augen breit eirund gewdélbt. Stirn kurz behaart,
Palpen kraftig, dicht und glatt beschuppt und behaart, den Kopf iiberragend. Basalglied kurz, stark
gekriimmt, ventral mit langeren, straff abstehenden Haaren, die feinen kegelf6rmigen Gebilde des Basal-
(1) Thaumantis noureddin sultanus, Subspecies, in mare supra fuscior, disco colore purpureo haud tincto, alis posticis in limbo distali minus
angulatis quam in subspecie typ. ; in femina alarum anticarum picturis flavis distinctioribus. Im Vergleich mit der typischen Form das G im allgemeinen
gesattigter sammet-braun, Vorderfligel stumpfer geeckt, Saumfeld nur wenig heller getént als die ubrige Fliigelfliche. Subcostalfleck nahe dem Apex
sehr vetloschen oder wenigstens verkleinert. Der bei der typischen Form in schrager Beleuchtung deutlich wahrnehmbare dunkelblaue Schiller véllig oder
bis auf ganz geringe Spuren fehlend. Hinterfliigel an der Miindung des vorderen Medianastes nur sehr schwach geeckt, die Saumzone etwas lichter
braungrau angeflogen, ohne Spur blauen Schillers im Basalfeld. Unterseite diisterer, die Saumzone beider Fligel nicht durch eine weisse, sondern tribe
graubraune Linie quer abgesetzt. Dieses Feld aut dem Hinterfliigel infolge des Vliigelschnittes schmaler. Q ebenfalls dunkler braun, mit sehr gut
ausgebildeter, hell ockergelber schrager Querbinde zwischen Zellschluss und Apex, die sich vom vorderen Medianast nach hinten rechtwinklig gebrochen
in zwei etwas getrubten gelblichen Flecken fortsetzt. Diese Zeichnung ist bei Q-Explaren aus Nord-Sumatra sehr verloschen, weisslich-gelb und nur in
2-3 schrag liegenden Flecken erhalten. (Das Bild von Westwood, l. c. t. 20, f. 2, scheint in dieser Beziehung zu stark idealisiert zu sein, was auch durch
die unahnlich colorierte Unterseite bestatigt wird.) Die Flecke der Submarginalreihe wischartig, im Kern reiner ockergelb. In diesem Farbton auch
die Cilien beider Fligel. Aut der Unterseite der schmale helle Schragstreif im Medianfeld meist verkiirzt, nur bis zu M M reichend oder auch schon
yorher rudimentar, der Farbton auf der ganzen Flaiche dunkler und intensiver in Licht und Schatten, Analozelle durchschnittlich grésser. Vorderfligel-
Linge ¢& 44-46, D 5o mm. Typ. i. coll. Stichel. — Siid-Borneo, Bandjermassin. — Zu vergl. Nachtrag, Seite 59.
20 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
fleckes in leicht gerundeten Reihen angeordnet. Mittelglied etwa von dreifacher Lange, aufwarts
gerichtet, dorsal mit einem schopfartig abstehenden Haarbiischel, an der Innenseite sparlicher beschuppt,
die Behaarung leicht gescheitelt. Endglied kurz, flach und spitz, etwas nach vorn gerichtet. Antennen
diinn, distal schwach spindelférmig verdickt, etwas tiber halber Lange des Vorderfliigels, unbeschuppt,
die Ventral-Rillen an den Endgliedern undeutlich. Thorax und Abdomen ziemlich schlank, letzteres
aber bedeutend kiirzer als der Hinterfltigel. Behaarung dicht, an den Schulterdecken langer, am
Einschnitt von Thorax und Abdomen etwas wollig. Vorderfliigel im allgemeinen Umriss rechtwinklig
dreieckig; Vorderrand stark gekriimmt, Apex spitz, manchmal leicht vortretend; Distalrand leicht konkay,
abgerundet rechtwinklig in den Hinterrand tibergehend, beim Q etwas eckiger. Hinterrand beim & stark
lappig konvex, beim Q ziemlich gerade. Costalis miindet in das letzte Drittel des Vorderrandes.
S C fiintistig; S C 1 nahe am Zellende abgezweigt. Anordnung der S C-Aeste verschieden, selbst
innerhalb ein und derselben Art etwas schwankend :
a.S C1mit der Costalis verwachsen oder dieser wenigstens ganz eng anliegend. Die Linge der ver-
wachsenen oder anliegenden Strecke verschieden. CS 2 weit jenseits der vorderen Zellecke entspringend,
etwa gegeniiber der Miindung von S C1, frei und etwa auf der Halfte zwischen S C 1 und S C3 in den
Vorderrand auslaufend. S C 3 und 4 in kurzer Entfernung von einander abgezweigt, jene noch in den
Vorderrand, diese in den Apex miindend und mit SC 5 eine missig lange Gabel bildend. S C 5 selbst
kurz hinter dem Apex in den Distalrand laufend (Anordnung namentlich bei Z. doubledaii u. aurelia).
b. SC 1 wie im Falle a. 5 C2 eine Wenigkeit naher zur Zellecke geriickt mit SC 1 auf kurze
Entfernung verwachsen oder dieser ganz dicht anliegend, die anderen Aeste wie vorher. (Anordnung
vorwiegend bei Z. luxerii, Taf. 1, Fig. 4).
c. SC rund S C 2 ganz frei, wenngleich ziemlich dicht unter einander und mit C in den Vorder-
rand auslaufend. Lage der iibrigen Teile wie bei a (Ausnahme-Fall bei Z. amethystus wallacet Q).
Zelle breit und kurz, unter halber Fliigellange. V D C fehlt oder ist ganz verkiimmert, M DC gut
ausgebildet, steil schrag nach hinten gerichtet, H DC in scharfer Kriimmung distalwirts laufend, in
spitzem Winkel die Mediana treffend. Hierdurch die hintere Zellecke etwas vorgeschoben. V R unmit-
telbar an der vorderen Zellecke entspringend, anfangs fast gerade, distal leicht gekriimmt. H R ziemlich
gestreckt, ebenso die 3 Medianiste, von denen M M und H M etwas naher liegen als M M und V M.
Aus dem Bug des letzteren entspringt ein nach vorn gerichteter,am Ende distalwarts gekriimmter Zapfen.
SM beim < stark geschweift, beim Q fast gerade. — Hinterfliigel fast eirund, hinten in einen schmalen,
schwanzartigen Zipfel ausgezogen. Vorderrand ziemlich flach, Apex abgerundet, Distalrand gewellt, Hin-
terrand geschweift, vorn gelappt. Praecostalis einfach, kurz, wurzelwarts gekriimmt. Costalis schrag nach
vorn aufsteigend, in den Apex miindend. SC stark gekriimmt. Zelle schmal, offen. V D C schrig abfal-
lend, MDC nicht besonders markiert, sondern in flacher Kriimmung in die H R iibergehend, so dass
die Radiales eine lange Gabel auf gemeinschaftlichem Schaft bilden. H DC fehlt. Wie auf dem Vorder-
fliigel, zweigt sich von dem Bug der Mediana ein Aderansatz nach vorn ab, der die hintere Radialis
beinahe erreicht und am Ende kurz hakenférmig distalwarts gekriimmt ist. SM und HM treffen am Fliigel-
rande die beiden seitlichen Winkel des Analfortsatzes. 6% mit machtig entwickelten tertiaren Geschlechts-
kennzeichen (Duftorganen). Stets vorhanden : Eine rundliche pfannenartige Vertiefung in der Membran
zwischen Costalis und Subcostalis, die mit mehligen Staubschuppen ausgefiillt und von einem blanken
Rande umgeben ist. An der proximalen Seite steht ein Haarbiischel, der aufrichtbar ist und in der Ruhe
die Vertiefung bedeckt; ferner eine tiefe, taschenartige Falte an der Submediana, in der ein strahlen-
oder pinselartig vorstreckbarer Haarbiischel ruht. Duftorgane in der Zelle tehlen (Section 2) oder sie
treten auf in Gestalt eines in gleicher Weise wie die beschriebene pfannenartige Vertiefung gebildete
Grube mit Haarbiischel von langlicher Form, allein oder in Begleitung von verschieden gelegenen
behaarten Duftflecken.
FAM. NYMPHALID 21
Die Zeuxidia-Arten zeichnen sich durch scharfen sexuellen Dimorphismus aus. Das 6 tragt auf
dunkelem sammet-schwarzbraunem Grunde schén leuchtend-blaue Binden und Flachen, das Q ist unan-
sehnlicher, meist mit lichtbraunen oder weisslichen Binden und Flecken auf braunem Grunde.
Schema des Fliigel-Gedders : Taf. 1, Fig. 4 (Anordnung wie zu é der Diagnose).
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Zeuxidia-Arten bewohnen Hinterindien, die
Philippinen und einen Teil der Sunda-Inseln. Die nérdlichste Grenze ihrer Verbreitung ist Ober-Tenas-
serim. Von dort reicht das Fluggebiet durch die Malayische Halbinsel siidlich bis Sumatra, Borneo und
Java, dstlich bis Luzon und Mindanao.
VERZEICHNIS DES ARTEN UND FORMEN
Sectio |. GLAUCOPTEROTI
@ mit Haarbiischeln in der Zelle des Hinterfliigels, Apicalfeld desselben
nicht grau bestdubt.
A. In dey Zelle des Hinterfliigels beim G swet Haarbiischel nebenetnander, der proximal gelegene auf pfannenartiger
Vertiefung mit blankem Rande, der distal gelegene zuweilen vudimentir [rd] oder fehlend | re}.
1. Zeuxidia amethystus Butler.
a. Zeuxidia amethystus amethystus Butler.
Zeuxidia amethystus, Butler in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 485 (1865).
Zeuxidia amethystus, Distant, Rhop. Malay., p. 72, t. 7, f. 1, 2 (1882); p. 424, t. 38, f. 5 (1886).
Zeuxidia amsthystus, Hagen in Berl. Ent. Zeit. Vol. 37, p. 144 (1892).
Zeuxidia amethystus, Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 261 (1896).
Malayische Halbinsel, Sumatra, Bangka.
+. Zeuxidia amethystus wallacei Felder.
Zeuxidia wallace’, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 461, n° 777, t. 62 f. 3 (1866).
Zeuxidia wallacet, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 341 (1873).
Zeuxidia amethystus var. wallacei, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2, p. 41 (1889).
Zeuxidia amethystus (part.) +-Z. wallace, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. n° 41, p. 106 (1904).
Borneo.
c. Zeuxidia amethystus amethystina Stichel, nov. subsp. (1).
Zeuxidia amethystina, Staudinger (u. Bang-Haas), Lep. Liste 34, p. 24 (1890). — Nomen nudum.
Zeuxidia amethystus, Semper, Schmett. Philipp. Vol. 1, p. 73 (1887).
Mindanao.
d. Zeuxidia amethystus victrix Staudinger.
Zeuxidia victrix (amethystus var, 2), Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2, p. 41 (1889):
Zeuxidia victrix, Semper, Schmett. Philipp. Vol. 1, p. 332 (1892).
Palawan.
¢. Zeuxidia amethystus masoni Moore (2).
Zeuxidia masoni, Moore in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 326 (2) (1878).
Zeuxidia masont, Marshall in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 51 (2), p. 39 (6,2) (1882).
(2) Z. amethystus amethystina. — G. Differt a subsp. typ. alarum anticarum!fascia caerulea latiore ; posticarum plaga caerulea anali ut in Z. a.
wallacei.—V orderfligel mit sehr spitzem Apex,die blaue Binde vorn stark verbreitert,ihre proximale Begrenzung beginnt am Vorderrande etwa gegenuber
der Abzweigung von SCt, berihrt die vordere Zellecke und schneidet in flachem Bogen unweit der hinteren Zellecke den vorderen Medianast. Distal
lasst die Binde nur einen kleinen Winkel am Apex mit zwei undeutlichen, weisslichen Flecken frei. Hinterfliigel mit etwas verbreiterter und nach vorn
ausgezogener blauer Analfiache wie bei Z. a, wal/ace?, der Ziptel am Hinterwinkel aber breiter und scharfer abgesetzt, beiderseitig weisslich eingetasst,
fast augenartig. Duftorgane in der Zelle des Hinterfliigels wie bei genannter Unterart, reichlich ausgebildet. — Typ. in coll. Staudinger, Dresden.
(2) Z. amethystus masoni Moore ist hinsichtlich der Ausbildung der G Sexual-Charaktere von den 5 aufgefiihrten Unterarten am meisten
differenziert. In der Zelle des Hinterfliigels fehlt der eine, bei der typischen Subspecies distal gelegene Haarbiischel vollstandig und auch der Copulations-
apparat lasst bemerkenswerte Unterschiede erkennen, so dass die Frage wegen Artberechtigung dieser Form in Erwagung gezogen werden muss. Da
aber Z. a. victrix yvermoge rudimentarer Ausbildung des betreffenden Haarbiischels der Hinterfligelzelle cin natiirliches Bindeglied darstellt, da ferner
das J von dem der typ. Subspecies weitere nennbare Unterschiede nicht aufweist und da endlich der Copulationsapparat der Art tiberhaupt etwas
variabel ist, so wurde die Einreihung als Unterart vorgezogen.
22 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Zeuxtdia masoni, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 286 (1882).
Zeuxidia masont, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 174, t. 144 f. 1, 1a, b (1893).
Zeuxidia masont, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 186, t. 4 f. 29 (1905).
Hinter-Indien : Tenasserim, Siam.
B. In der Zelle des Hinterfliigels bem Sf swet Haarbiischel hintereinander.
a) Der hintere Haarbiischel pinselartig auf einem Duftfleck.
2. Zeuxidia doubledaii Westwood.
Zeuxidia doubledaii, Westwood (Doubleday u.) in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2,
p. 329 (1851).
Zeuxidia doubledayi, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 88 (1865).
Zeuxidia doubledati, Marshall u. Nivéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 287, n° 274 (2) (1883).
Zeuxidia doubledayt +-Z. horsfeldit, Honrath in Berl, Ent. Zeit. Vol. 32, p. 253 (1888).
Zeuxidia doubledati, (? part.), Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 262 (1896).
Zeuxidia doubledaii, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. no 41, p. 106 (1904).
Zeuxidia luxertt (2) (non Z. 1. S Hiibner), Westwood (u. Hewitson) in Doubleday, Westwood u. Hewitson,
Gen. diurn. Lep. t. 5 f. 1 (1849).
Zeuxidia horsfieldii, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 460, n° 776, t. 62 f. 4 (GS) (1866).
Zeuxidia horsfieldii, Druce in Proc. Zool, Soc. Lond. p. 340 (1873).
Zeuxidia honratht, Staudinger (u. Bang-Haas), Lep. List. no 38, p. 30 (nom. nud.) (1894).
Zeuxidia (Zeuxaltis) pryert, Butler in Ann. Nat. Hist. Vol. 19, p. 470 (1897) (1).
Zeuxidia pryert, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat Soc. no 41, p. 106 (1904).
Borneo, Sumatra, Billiton ?, Java ?.
b) Der hintere Haarbiischel kranzartig der hinteren blanken Umrandung des vorderen Duftfleckes angelegt.
3. Zeuxidia nicevillei Fruhstorfer (2). — Taf. 3, Fig. 5, &.
Zeuxidia nicevillei, Fruhstorfer in Ent. Nachr. Vol. 21, p. 196, S (2?) (1895).
Zeuxidia nicevillei, Niceville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 64, p. 392 (1896).
Zeuxidia nicevillei nov. subspec., Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 33 (1905).
Zeuxidia doubleday:, Distant, Rhop. Malay, p. 424, f. 124 (G), ?t. 38 f. 6 (Q) (1886).
Zeuxidia doubledati (?part.), Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 162 (1896).
Sumatra, ? Billiton, Malayische Halbinsel (Perak, Malacca), Bangka.
4. Zeuxidia luxerii Hiibner.
a. Zeuxidia luxerii luxerii Hiibner. — Taf. 3, Fig. 6, 2.
Zeuxidia luxerti, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 270 (1822-26).
Zeuxidia luxeytt, Westwood, Cab. Orient. Ent. t. 19, f. 5 (1848).
Zeuxidialuxerret, C. a. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 461 (1866).
Zeuxidia luxeyi, Snellen in Tijdschr. v. Ent. Vol. 38, p. 16 (1895). .
?Zeuxidia boisduvalii, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 329, no 3
(Q) (1851). (3).
Aglaura nephus, Boisduval, M S.
Java, Bali.
(1) Zexxaltis pryeré Butler ist nach Fruhstorfer, Berl. Ent. Zeit. Vol. 48, p. 93 (1903), synonym mit Z. Lorsfie/dii Felder (= doubledaii West-
wood). Es handelt sich um eine monstrése Bildung. :
(2) In Z. nzcevillei wurde vom Autor eine Lokalform von Z. dowb/edaii vermutet. Martin (1. c.) findet keinen Unterschied zwischen beiden;
vielleicht hat als Vergleichsmaterial die wahre Z. doubledazi gedient, welche aut Sumatra ebenfalls in typischen Sticken vorkommen soll (nach Ausweis
der Bezettelung eines ¢ i. coll. Staudinger, sofern diese richtig ist). Nach dem vorliegenden Original kann Z xicevil/et G vermoége der charakteristischen
und von denen der Z. doubledait durchaus verschiedenen Anlage der Duftorgane in der Zelle des Hinterfligels, trotz allgemeiner Aehnlichkeit im ibrigen,
nicht mit letzterer als Subspecies vereinigt werden. Die gleiche Anlage der Haarbischel wiederholt sich bei Z. Zwxer#z und man wire geneigt anzu-
nehmen, dass Z.#cevid/ez eine Lokalrasse jener Art vorstellt,wenn diese nicht auf Sumatra schon durch eine andere Form (Z. ¢.szcculenta) vertreten ware.
Es bleibt dann noch die Méglichkeit, dass Z. dzxeréi hier in zwei Zustands- (Jahreszeit-) Formen auftritt; bei der geringeren Wahrscheinlichkeit des Falles ©
und namentlich mit Riicksicht daraut, dass sich die Form auf dem Festlande in fast unveriinderter Weise wiederholt, wird vorgezogen, Z. x¢cevillez als
gute Art zu behandeln, zumal auch die Bindenzeichnung gegen beide in Frage kommende Arten konstante Unterschiede erkennen lasst. Ob das als
Z. nicevillei von Fruhstorfer beschriebene und spater aus Distant Rhop. Malay. identifizierte Q (1. c. 1895 und 1905) zu dieser Art gehort, oder eine
leicht abandernde Form von Z. doudb/edazi vorstellt, muss unentschieden bleiben. Die etwas zweifelhafte erste Diagnose Fruhstorfers sei hier durch die
Abbildung der Type des ¢ ergiinzt.
(3) Z. b0isduvalii Westwood wird fir das wahre 9 von Z. /wxevii Hiibner angesehen (zu vergl. : Kirby in : Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. af
Neue Ausg. p. 46). Da die Beschreibung Westwoods aber nur ungewiss aut solche QQ passt, welche unzweifelhaft zu Z. Zwxev/i gehéren (s. fig.), so wird
Citat unter? angetiihrt.
FAM. NYMPHALIDA 23
6. Zeuxidia luxerii succulenta Stichel, nov. subsp. (1).
Sumatra.
C. In der Zelle des Hinterfliigels bem G nur ein Haarbiischel.
a) Dieser Haarbiischel klein, pinselartig.
5. Zeuxidia dohrni Fruhstorfer.
Zeuxidia dohrni, Fruhstorfer in Ent. Nachr. Vol. 19, p. 257 (1893).
Zeuxidia dohrni, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 55, p. 116, t. 3, f. 2, t. 4, f. 6 (1894).
Zeuxidia dohrni, Snellen in Tijdschr. v. Ent. Vol. 38, p. 16 (1895).
Zeuxidta horsfieldit vera, Staudinger (u. Bang-Haas), Lep. Liste no 38, p. 30 (1894).
Java.
6. Zeuxidia semperi Felder.
Zeuxidia semperi, Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 5, p. 304 (1861); Reise Novara, Lep.Vol. 2 (2), p. 460, t. 62
f. 1, 2 (1866).
Zeuxidia semperi, Semper, Schmett. Philipp. Vol. 1, p. 72 (1887); p. 332 (1892).
Luzon, Mindoro.
b) Der Haarbiischel biivstenartig, distal zugespitzt, die Zelle fast ganz bedeckend.
7. Zeuxidia sibulana Honrath.
Zeuxidia sibulana, Honrath in Berl. Ent. Zeit. Vol. 28, p. 205, t. 2, f. 2, t. 3, f. 2a (0), t. 4 f. 2b (Q) (1884).
Zeuxidia sthulana, Semper, Schmett. Philipp. Vol. 1, p. 73 (1887).
Mindanao : Sibulan.
Sectio Il. POLIODERMI
& ohne Haarbiischel in der Zelle des Hinterfliigels, Apicalfeld desselben
erau bestaubt.
5. Zeuxidia aurelia Cramer.
a. Zeuxidia aurelia aurelia Cramer.
Papilio aurelius, Cramer, Pap. Exot. Vol. 2, p. 110, t. 168 f. A, B (2) (1779).
Papilio aurelius, Herbst (Jablonsky u.), Nature. Schmett. Vol. 3, p. 119, t. 38, f. 1, 2 (@) (1788).
Moera aurelia, Hiibner, Verz. Schmett. p. 51 (1816).
Morpho aurelius, Godart (Latreille u.), in Enc. meth. Zool. Vol. 9, p. 439 (1819).
Zeuxidia aurelius, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 329, n° 4 (1851).
Amathusia auyelius, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 45 (1869).
Zeuxidia aurelius, Distant, Rhop, Malay. p. 425, t. 37 f. 1 (1886).
Amathusia (Amaxidia) aurelius, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 188 (1887).
Amaxidia aurelius, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 179 (part.) (1893).
Zeuxidia (Amaxidia) aurelius, Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 262 (1896).
Amaxidia aurelius auvelius, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 190 (1904).
Sumatra, Malayische Halbinsel.
5. Zeuxidia aurelia aureliana Honrath.
Amaxidia aurelius var. aureliana, Honrath in Berl. Ent. Zeit. Vol. 33, p. 162 (1889).
Amaxidia aurelius aureliana, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 190 (1904).
Amaxidia aureliana, Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41, p. 107 (1904).
Zeuxidia aureliuns, Hewitson (non Cramer!), Exot. Butt. Vol. 4 t. Zeuxidia & Aemona, f. 1, 2 (1868).
Zeuxidia aurelius, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 341 (1873).
Borneo
(x) Z. luxerti succulenta.— G Differt a subsp. typ. alarum omnium colore atterimo, fasciis non violaceis, potius colore lapidis Lazuli.cGrundfarbe
der Pligel tief sammetschwarz, nur der Apex des Vorderfliigels etwas heiler. Binde des letzteren wie bei der typ. Unterart, aber licht lasurblau anstatt violett,
wie auch der Apicalfleck des Hinterfligels. Dieser Fleck in ungewisser Zerstaubung nach hinten etwas bindenartig bis zum mittleren Medianast verlangert,
Die Discalflache beider Fligel im Anschluss an die blaue Zeichnung bei schrager Beleuchtuug tief lasurblau schimmernd. Unterseite wie bei der typ.
Subspecies, etwas satter im Farbton, im mittleren Medianzwischenraum des Hinterfliigels ein dritter, ockergelber, schwarzlich umzogener Augenfleck,
etwas kleiner als die Analozelle, und im nachsten Aderfeld noch ein kleiner, weniger deutlicher Ringfleck. Diese Merkmale vielleicht individuell, — Typ.
i. coll. Stichel, N. O.-Sumatra : Deli. :
24 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
5. GENUS THAURIA, MOORE
Thauria. Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 185 (spec. typ. : T. aliris) (1895); Crowley in Ann. Nat. Hist. (6)
Vol. 17, p. 66 (1896); Fruhstorfer in Ins. Bérse Vol. 20, p. 396 (1903); Shelford in Journ. Straits
Branch Asiatic Soc. n° 41 p. 108 (Sectio Gen. Thaumantis) (1904); Bingham in Fauna Brit. Ind.
Butt. Vol. 1, p. 195 (1905).
Thaumantis. Westwood in Trans, Ent. Soc. Lond. (2) Vol. 4, p. 176 (part.) (spec. : T. aliris)
(1858) ; Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 88 (part.) (spec. ead.) (1865) ;
Butler in Journ. Linn. Soc. Lond. Zool. Vol. 13, p. 115 (spec. : T. pseudalivis) (1867); Kirby, Cat.
diurn. Lep. p. 120 (part.) (1871); Butler in Trans. Linn. Soc. Lond. (2) Zool. Vol. t, p. 538
(spec.: T. psewdalivis) ; Kirby, Cat. diurn. Lep. Suppl. App. p. 846 (part.) (spec. ead.) (1877); Distant,
Rhop. Malay. p. 79 (part.) (1882); Butler in Ann. Nat. Hist. (5) Vol. 10, p. 372 (1882); Marshall
u. Nicéville. Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 304 (part.) (1883); Staudinger (u. Schatz), Exot.
Schmett. Vol. 1, p. 203 (part.) (1887); Haase in Corr. Bl. Iris Vol. 1. p. 306 (part.) (1888) ; Schatz
(Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 185 (1889).
Morphindra. Rober in Ent. Zeit. Stettin Vol. 66, p. 337 (spec. typ.: M. aliris) (1903).
Allgemeine Charaktere. — Kopf gross, Augen breit elliptisch gewélbt, nackt. Stirn kurz und
dicht behaart. Palpen kraftig, dicht und glatt beschuppt und behaart. Basalglied sehr kurz, gekriimmt,
ventral mit etwas langeren, zottig abstehenden Haaren. Basalfleck ziemlich klein, hellbraun chitinisiert,
eifo6rmig, dicht mit feinen, aufwarts gerichteten Kegelgebilden besetzt. Mittelglied bedeutend linger,
aufwarts gerichtet, am Ende dorsal mit abstehenden Granenhaaren, welche zum Teil schopfartig ver-
dichtet stehen. Endglied kurz und spitz, etwas nach vorn gerichtet, den Kopf nicht tiberragend. Antennen
diinn, etwas tiber halber Lange des Vorderfliigels, distal kaum merklich verdickt, Endglieder etwas
verjiingt. Schaft dorsal nackt, ventral mit zwei Rillen, welche von drei Liangsgraden getrennt und
begrenzt sind. In ihnen, spiarlich verteilt, feine Harchen und einzelne, zu beiden Seiten paarig angeordnete
Borsten. Thorax und Abdomen robust, stark behaart. Abdomen beim © ventral nichst dem Einschnitt
kielartig zusammengedriickt, seitlich mit reichlicher Duftschuppenablagerung in zwei weisslichen
Fleckchen und ventral fast in ganzer Linge mit sammetartig braunem Belag ; an den Endsegmenten
lateral je drei lange Haarbiischel. Vorderfliigel breit rechtwinklig dreieckig. Vorderrand stark gekriimmt,
Apex ziemlich spitz, Distalrand leicht konkav, Hinterwinkel leicht abgerundet rechteckig, Hinterrand
beim & stark konvex gelappt. Costalis und Subcostalis getrennt. Erstere sehr lang, im letzten Viertel
des Vorderrandes auslaufend. Subcostalis 5-astig. S C 1 entspringt in einiger Entfernung proximal vom
Zellende, ist sehr zart und miindet in kurzem Abstande von der Costalis. Etwa gegeniiber der Miindung
der letzteren zweigt sich erst S C 2 ab, in kurzem Abstande gefolgt von S C 3, beide schraég in den
Vorderrand gehend. Unweit SC 3 gabelt sich die Subcostalis in die kurzen S C 4 und 5, von denen ersterer
den Apex erreicht, letzterer bald hinter jenem in den Distalrand trifft. Zelle breit und kurz, unter halber
Fligellange, die hintere Ecke eine Wenigkeit distal vorgeschoben. V DC in spitzem Winkel in schrag
distaler Richtung von SC abgezweigt, ziemlich kurz, MDC fast ganz verkiimmert, rechtwinklig nach
hinten gestellt, H D C bedeutendlanger, anfangs in scharfer Kriimmung in die Zelle einspringend, dann
gestreckt in distaler Richtung laufend und die Mediana in spitzem Winkel treffend. Die Radiales, ent-
entsprechend der Kiirze der MDC, dicht beieinander entspringend, die vordere etwas schiarfer, die
hintere flacher gebogen. H M und M M ziemlich parallel, leicht gekriimmt, V M proximal mit starkerer
Kriimmung, dann der M M gegen das Ende wieder etwas genihert. S M leicht geschweift. — Hinter-
fliigel nahezu elliptisch, Vorderrand ziemlich stark gekrimmt, am Apex rund in den Distalrand iiber-
gehend. Dieser etwas abgeflacht, leicht gewellt; Hinterwinkel kaum merklich abgesetzt, Hinterrand
ziemlich gerade, vorn stark gelappt. Costalis scharf nach vorn gekriimmt, Praecostalis kraftig, recht-
FAM. NYMPHALIDZE 25
winklig von ersterer abgezweigt, schrig nach vorn gerichtet, distal etwas gegen die Fligelwurzel
gekriimmt. SC anfangs gestreckt, nach Abzweigung der V DC nach vorn gebogen. V D C ziemlich
lang, schrag gestellt, M DC als Aderteil nicht erkennbar, sondern in flach S-férmiger Kriimmung in
H Riibergehend. Die Radiales bilden eine lange, leicht gekriimmte Gabel. Die drei Mediandste in
annahernd gleichem Abstand voneinander, parallel, in normaler Stellung; V M an der ziemlich scharfen
Kriimmung etwas verdickt, mit einem kurzen, nach vorn gerichteten Zapfen, der in eine feine Aderfalte
uibergeht. Dieses Kennzeichen in ahnlicher Weise wie bei der Gattung Amathusia und Amathuxidia,
dort aber auf die Faltenader beschrinkt. S M lang gestreckt, leicht geschweift, H A zart, ebenfalls von
betrachtlicher Linge, stirker gekrimmt. — 6% mit grossem, grob aufgetragenem Duftschuppenfleck vor
und in der Zelle, diese fast ganz ausfiillend, und zwei breit biirstenartigen Haarbiischeln, von denen
der eine, schwachere, vor der Subcostalis, der andere, gréssere, im vorderen Teil der Zelle gelegen ist.
Die Haare beider Biischel, namentlich aber die des grésseren nach hinten gekriimmt und die Duft-
schuppenzone fast ganz bedeckend. Ein weiterer kleiner Haarpinsel an der Hinterrandader auf dem
dort fast kahlen, das Abdomen umschliessenden vorderen Lappen des Hinterrandfeldes.
Grosse, prachtige Schmetterlinge mit weisser Binde des Vorderfliigels und grossen goldgelben
Distalflecken des Hinterfliigels auf schwarzbraunem Grunde, Unterseite des Hinterfliigels in der
rotbraunen Distalhalfte mit zwei grossen bunten Augenflecken.
Schema des Fliigelgediders : Taf. |, Fig. 5.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Formen der einen zu dieser Gattung gehé-
rigen Art finden sich auf Borneo, der Malayischen Halbinsel und in Hinterindien.
VERZEICHNIS DER FORMEN
1. Thauria aliris Westwood.
a. Thauria aliris aliris Westwood.
Thaumantis aliris, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 176 (part. : 9) t. 17 (1858).
Thaumantis alivis, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burn. Ceyl. Vol. 1, p. 308 (1883).
Thaumantis aliris, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 204, t. 64 (1887).
Thauria aliris, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 187 (1895).
Morphindra aliris, Rober in Ent. Zeit. Stett. Vol. 66, p. 337 (1903).
Thauria aliris aliris, Fruhstorfer in Ins. Borse, Vol. 20, p. 396 (1903).
Thaumantis alirvis, Shelford in Journ. Straits Branch. Asiat. Soc. n° 41, p. 108 (1904).
Borneo.
/. Thauria aliris intermedia Crowley.
Thauria intermedia, Crowley in Ann. Nat. Hist. (6), Vol. 17, p. 66 (1896).
Thauria aliris intermedia, Fruhstorfer in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 396 (1903).
Burma.
ce. Thauria aliris pseudaliris Butler.
Thaumantis pseudalivis, Butler in Journ. Linn. Soc. Lond., Zool. Vol. 13, p. 115 (1867).
Thaumantis pseudalivis, Butler in Trans. Linn. Soc. Lond. (2), Zool. Vol. 1, p. 538, t. 68 f. 1 (1876).
Thaumantis pseudaliris, Distant, Rhop. Malay. p. 79, t. 8 f. 3 (1882).
Thaumantis pseudaliris, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 307 (1883).
Thauria pseudaliris, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 185, t. 149 f. 1, 1a-b (1895).
Thauria alivis pseudalivis, Fruhstorfer in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 396 (1903).
Thauria pseudalivis, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 195 (1905).
Thaumantis alivis, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 176(part. : &) (1851).
Malayische Halbinsel, Tenasserim, Burma.
d Thauria aliris lathyi Fruhstorfer.
Thauria aliris lathyi, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 15, p. 177 (1902).
Thauria alirvis lathyi, Fruhstorfer in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 396 (1902).
Tongking.
26 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
TRIBUS TAENARIDI
Mittlere Discocellularis des Vorderfliigels verkiimmert oder nur kurz entwickelt, alsdann die
hintere Discocellularis stark S-férmig gebogen. Hinterfliigel hinten abgerundet. Hinterrand des Vorder-
fliigels beim © fast gerade oder nahe der Wurzel gelappt. Tegumen des Copulationsapparates mit
zwei spangenartigen Lateralfortsatzen unter dem Uncus.
5 Gattungen :
6. GENUS STICHOPHTHALMA, FELDER
Stichophthalma. C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 27 (spec. un. : St. howqua) (1862);
Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 271, n° 986 (1875); Marshall u. Nicéville, Butt.
Ind. Burm, Ceyl. Vol. 1, p. 308 (1883); Wood-Mason u. Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal,
Vol. 55 (2), p. 353 (1886); Elwes u. Nicéville, ibidem, p. 419 (1886); Staudinger (u. Schatz),
Exot. Schmett. Vol. 1, p. 204 (1887); Haase in Corr. BI. Iris, Vol. 1, p. 306 (1888); Schatz
(Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 184 (1889); Leech, Butt. Chin. Jap. Cor. p. 113 (1892) ;
Kirby, Handb. Lep. Vol. 1, p. 197 (1894); Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 202 (1895); Bingham in
Fauna Brit. Ind. Lep. Vol. 1, p. tg1 (1905).
Stictopthalma, Stictophthalmia. Elwes (u. Méller) in Trans. Ent Soc. Lond. 1888, p. 333,
corr. p. VIII.
Thaumantis. Westwood (u. Hewitson) in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. t. 55
f. 2 (spec. : T. camadeva) (1849), Vol. 2, p. 335 (part.) (1851); Westwood in Trans. Ent. Soc.
Lond. (2), Vol. 1, p. 174 (sp. : T. howgua) (1851) u. Vol. 4, p. 170 (part.: 2. divisio) (1858); Chenu
u. Lucas, Encycl. Papill. p. 166 (1853); Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp.
Vol. 1, p. 214 (part.) (spec. : 7. nourmahal, camadeva) (1857); Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver.
Regensb. Vol. 18, p. 105 (1864), Vol. 19, p. 88 (1865) (part.); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 119
(part.) (1871); Wood-Mason in Proc. Asiat. Soc. Bengal 1877, p. 163 (spec.: T. louisa) ; Marshall in
Journ. Asiat. Soc. Bengal. Vol. 51 (2), p. 39 (spec. ead.) (1882); Haase in Corr. Bl. Iris, Vol. 1,
p. 104 (part.) (spec.: T. camadeva, howqua) (1886); Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1,
p. 204 (part.) (spec. : T. camadeva, cambodia, howqua, louisa, nourmahal).
Morpho (Thaumantis), Westwood, Cab. Orient. Ent. p. 9 (spec. M. [T.] camadeva) (1848).
Allgemeine Charaktere. — Kopf ziemlich klein, Augen breit eirund gewélbt, nackt. Palpen
dicht und glatt beschuppt und behaart; die Behaarung leicht gescheitelt. Basalglied kurz, stark
gekriimmt, ventral mit langeren, zottig abstehenden Haaren. Basalfleck hellbraun chitinisiert, klein, in
ganzer Ausdehnung von feinen und spitzen Kegelgebilden reihenweise dicht besetzt, die Kegel etwas
nach oben gerichtet. Mittelglied tiber doppelt so lang als ersteres, grésserenteils der Stirn anliegend,
distal an der dorsalen Seite mit schopfartig abstehendem Haarbiischel, Endglied kiirzer, flach, zapfen-
artig, etwas nach vorn gerichtet, den Kopf wesentlich itberragend. Antennen diinn, distal kaum merklich
verdickt, Endglieder verjiingt. Die Segmente scharf abgesetzt, ventral die Langsgrade und Rillen bis
zur Spitze gut ausgebildet, die Harchen in den Gruben der einzelnen Segmente auf der ganzen Flache
ziemlich gleichmassig verteilt, Schaft dorsal unbeschuppt. Thorax klein, Behaarung an den Einschnitten
etwas wollig, sonst glatt, an den Schulterdecken langer. Abdomen missig gross entwickelt, etwa von
halber Lange des Hinterfliigels. — Vorderfliigel breit, rechtwinklig dreieckig, Vorderrand gekriimmt,
Apex ziemlich eckig, Distalrand leicht konvex, Hinterwinkel rechteckig, leicht abgerundet, Hinterrand
gerade. Costalis etwa von zwei Dritteln der Lange des Vorderrandes; Subcostalis vierastig, SC 1
ungefahr am zweiten Drittel der vorderen Zellwand abgezweigt, lang gestreckt der C folgend und
FAM. NYMPHALIDA® 27
unweit des Apex in den Vorderrand auslaufend. S C2 entspringt kurz vor der langlichen Gabelung der
beiden letzten Aeste und lauft etwa in der Mitte zwischen SC 1 und SC 3 in den Vorderrand aus, letzterer
Ast miindet in den Apex, S C 4 kurz hinter diesem in den Distalrand. Zelle breit und kurz, die beiden
Ecken in fast gleichem Abstande von der Fliigelbasis. VIC und MDC verkiimmert und ganz kurz;
die Radiales entspringen dicht bei einander an der vorderen Zellecke und verlaufen leicht gekriimmt,
die vordere mehr als die hintere. H DC sehr lang, wurzelwidrts eingebogen und in spitzem Winkel die
Mediana vor deren Biegung treffend. V M stark gekriimmt. MM und HM annihernd parallel,
SM nahe der Basis stark gekriimmt, dann ziemlich gerade, parallel zum Hinterrande, nahe dem
Hinterwinkel auslaufend. Hinterfliigel annahernd eirund, Vorderrand abgeflacht, Apex abgerundet,
Distalrand konvex, leicht gewellt, Hinterwinkel deutlich abgesetzt, Hinterrand leicht geschweift, vorn
gelappt. Praecostalis einfach, leicht wurzelwarts gekriimmt. Costalis unweit des Vorderrandes, schrag
aufsteigend, leicht gebogen, in den distalen Teil des Randes auslaufend. SC in kurzer Entfernung
von der Fliigelbasis abgezweigt, gekriimmt in den Apex miindend. V DC ziemlich lang, schraég
gestellt, M D C nicht besonders abgesetzt sondern in flachem Bogen in H R iibergehend. H D C fehlt,
die Radiales bilden eine lange, leicht gekriimmte Gabel. Zelle schmal, offen. Verlauf der tibrigen
Adern normal. g‘ mit einem kleinen, nach vorn gerichteten Haarbiischel dicht hinter der Mediana
nahe der Fliigelwurzel, der aufrichtbar ist und dann ein biirstenartiges Aussehen hat.
Grosse Falter, blaulich weiss und satt-braun gefiarbt oder ockergelb, zum Teil mit Uebergang
der Grundfarbe in Weiss, mit schwarzbrauner Randzeichnung. Unterseite mit mehr oder weniger
reichlich ausgebildeten discalen Augenflecken; sie erinnern in Gestalt und Zeichnung der Unterseite
an die neotropische Gattung Morvpho und kann Stichophthalma als Bindeglied zwischen den Amathustinae
und Morfhinae s. str. gedacht werden.
Schema des Fliigelgedders: Taf. 1, Fig. 6.
Geographische Verbreitung der Arten : Die Arten dieser Gattung bewohnen Nord- und
Hinterindien, sowie das siidliche China.
Cohors |. CAMADEVIFORMES
Vorderfliigel mit weissem Muttelfeld.
1. Stichophthalma camadeva Westwood.
a. Stichophthalma camadeva camadeva Westwood.
Morpho | Thaumantis) camadeva, Westwood, Cab. Or. Ent. p. 9, t. 4, f. 1, 2 (1848).
Thaumantts camadeva, Westwood (u. Hewitson), in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. t. 55,
f. 2 (1849).
Thaumantts camadeva, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 335, no 7
(1851); Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 177 (1858).
Stichophthalma camadeva, Marshall u. Niceville, Butt. Ind. Burm. Ceylon, Vol. 1, p. 309, f. p. 310 (1883).
Thaumantis camadeva, Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 204, t. 65 (1887); Vol. 2, p. 185 (1889).
Stictopthalma (corr. : Stictophthalmia) camadeva, Elwes u. Nicéville in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 333 (1888).
Stichophthalma camadeva, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 203, t. 158, f. 1, 1a (1895).
Stichophthalma camadeva, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 192 (1905).
Nord-Indien : Sikkim, Manipur.
5. Stichophthalma camadeva camadevoides Nicéville (nom. vix conserv.).
Stichophthalma camadevoides, Nicéville in Journ. Bomb. Soc. Nat. Hist. Vol. 12, p. 330 (1898).
Stichophthalma camadeva var. nicevillei, Rober in Ent. Nachr. Vol. 26, p. 203 (1900).
Burma : Chin Hills; Assam : Khasia Hills.
2. Stichophthalma cambodia Westwood.
Thaumantis cambodia, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3, t. Dasyophthalma & Thaum. f. 2 (1862).
Stichophthalma cambodia, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 207 (1895).
Cambodia.
28 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
3. Stichophthaima louisa Wood-Mason.
a. Stichophthalma louisa louisa Wood-Mason.
Thaumantis louisa, Wood-Mason in Proc. Asiat. Soc. Bengal, p. 163 (cd) (1877).
Thaumantis louwisa, Wood-Mason in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 47 (2), p. 175, t. 12 (1878).
Thaumantts louisa, Marshall u. Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 5r (2), p. 39 (Q) (1882).
Stichophthalma louisa, Marshall u. Nicéville in Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 311 (1883).
Stichophthalma howqua var. louisa, Honrath in Berl. Ent. Zeit. Vol. 36, S. B. p. 12 (1891).
Stichophthalma louisa, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 204, t. 159, f. 1, 1a (1895).
Stichophthalma louisa, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 194 (1905).
Ober- Tenasserim, Burma.
. Stichophthalma louisa fruhstorferi Rober.
Stichophthalma fruhstorferi, Rober in Soc. Ent. Vol. 17, p. 153 (1903).
Zentral-Tongking.
c. Stichophthalma louisa mathilda Janet (1) Taf. 4, Fig. 7, ¢.
Stichophthalma mathilda, Staudinger (u. Bang Haas), Lep. Liste, N° 39, p. 31 (1895) (nomen nud.).
Stichophthalma mathilda, Janet in Bull. Soc. Ent. France, ne 15, p. 215 (1905).
Siam : Laos-Gabiet. Stid-Ost-Tongking.
Cohors Il. HOWQUIFORMES
Vorderfliigel ohne weisses Mittelfeld.
4. Stichophthalma howqua Westwood.
a. Stichophthalma howqua howqua Westwood.
Thaumantis howqua, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 1, p. 174 (1851); Vol. 4, p. 178, t: 18 f. 2, 2a
(1858).
Stichophthalma howqua. C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 27 (1862).
Stichophthalma howqua, Marshallu. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 311 (1883).
Stichophthalma howqua, Leech, Butt. Chin. Jap. Cor. p. 113 (1894).
Stichophthalma howqua, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 206 (1895).
Nord- und Zentral-China, Formosa.
b. Stichophthalma howqua sparta Nicéville (subsp. dubia) (2).
Stichophthalma sparta, Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 58 (2), p. 2, t. rf. 4 (1894).
Stichophthalma sparta, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 217, t. 167 f. 2, 2a (1895).
Stichophtalma howqua, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 193 (part.) (1905).
Nord-Indien : Manipur.
c. Stichophthalma howqua suffusa Leech.
Stichophthalma howqua var, suffusa, Leech, Butt. Chin. Jap. Cor. p. 114, t. 1 f. 3 (1892).
Stichophthalma fusca, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 206 (1895).
Stichophthalma howqua tonkiniana, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 16, p. 97 (1901).
Siid- und West-China; Nord-Tongking.
5. Stichophthalma neumogeni Leech. — Taf. 4, Fig. 8 Q.
Stichophthalma neumogent, Leech, Butt. Chin. Jap. Cor. p. 114, t. 1 f. 5 (1892).
Stichophthalma neumogeni, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 206 (1895).
West-China : Omei-Shan, Tien-Tsuen.
(t) Die Beschreibung dieser schon seit einigen Jahren unter gleicher Bezeichnung als « Art» im Verkehr befindlichen Form erfolgte wahrend
der Correctur dieser Arbeit an oben citierter Stelle und wurde dadurch die hier beabsichtigte Publizierung des Catalognamens iiberholt.
(2) Diese als Unterart registrierte Form scheint nur eine individuelle Aberration der nachstfolgenden zu sein. Es ist jedoch immerhin nicht
ausgeschlossen, dass sich die Art in Nord-Indien zu einer solchen bestandigen Zwischenstufe ausgebildet hat.
FAM. NYMPHALIDA 29
6. Stichophthalma nourmahal Westwood.
Stichophthalma nourmahal, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol, 1, p. 192 (1905).
a. Stichophthalma nourmahal nourmahal Westwood.
Thaumantis nourmahkal, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 337 (1851).
Thaumantis nourmahal, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 178, t. 18 f. 1, ra (Q) (1858).
Stichophthalma nourmahal, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 312 (1883).
Stichophthalma nourmahal, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 205, t. 160 f. 1, 1a, rb (O 2) (1895).
Sikkim.
6b. Stichophthalma nourmahal nurinissa Niceville.
Stichophthalma nurinissa, Nicéville in Journ. Bombay Soc. Nat. Hist. Vol. 5, p. 131, t. C. (1890).
Stichophthalma nurinissa, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 206, t. 161 f. 1, 1a, b (6 2) (1895).
Stichophthalma nourmahal «race » nurinissa, Bingham in Faun. Brit. Ind. But. Vol. 1, p. 192, 193 (1905).
Bhutan.
7. GENUS AEMONA, HEWITSON
fEmona. Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, t. Zeuxidia & AZmona (1868); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 119;
Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 103, n° 24 (1875); Wood-Mason in Journ. Asiat.
Soc. Bengal, Vol. 49 (2), p. 175 (1880); Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1,
p. 302 (1883); Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203 (1887), Vol. 2, p. 187 (1889);
Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 212 (1895); Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 196 (1905).
Clerome. Hewitson in Trans. Ent. Soc. Lond. (3), Vol. 4, p. 566 (spec. : C. amathusia) (1867).
Allgemeine Charaktere.— Kopf klein, Augen eirund gewélbt, nackt, Stirn kurz behaart. Palpen
klein, dicht beschuppt und behaart, Basalglied kurz, stark gekriimmt, ventral mit etwas langeren Haaren
bewachsen ; Basalfleck klein, hellgelb chitinisiert. Mittelglied etwa von dreifacher Lange des ersteren,
dorsal ohne oder nur mit schwach angedeutetem Haarschopf. Endglied kurz, spitz eiférmig, flach, den
Kopf nicht tiberragend. Antennen diinn, etwas unter halber Fliigellange, distal ganz schwach spindel-
formig verdickt, der Schaft dorsal auf etwa drei Viertel der Linge diinn beschuppt, Ventral-Rillen
und Grade gut ausgepragt, die Harchen in den Gruben spirlich und ziemlich gleichmassig verteilt.
Thorax und Abdomen in verhialtnismassig normaler Entwickelung, an den Einschnitten etwas wollig,
sonst kurz und glatt behaart. Vorderfliigel rechtwinklig dreieckig, Vorderrand gekriimmt, Apex spitz,
meist etwas vortretend, Distalrand dementsprechend leicht konkav oder aber ganz flach konvex. Hinter-
winkel abgerundet rechtwinklig, Hinterrand gerade. Costalis lang, im dritten Viertel der Lange des
Vorderrandes auslaufend. Subcostalis fiinfastig, S C 1 in einiger Entfernung proximal vom Zellende
abgezweigt, schrag in die Costalis einlaufend und mit dieser auf eine langere Strecke verwachsen (tr).
S C4 und 5 bilden eine kurze Gabel, letzterer in den Distalrand, ersterer in den Apex auslaufend.
Kurz vor der Gabelung, unter sich in naher Entfernung, sind S C 2 und 3 abgezweigt und laufen in
gleich schrager Richtung in den Vorderrand. Zelle kurz und breit, unter halber Fliigellange, die beiden
Ecken in annahernd gleicher Entfernung von der Fliigelbasis. V D C sehr kurz, M D C nur wenig langer,
rechtwinklig nach hinten gestellt. H D C viel linger als jene, leicht wurzelwarts eingebogen, die Mediana
in spitzem Winkel treffend. V R und H R in annihernd gleicher Kriimmung verlaufend, nahe bei
einander entspringend. V M scharf gekriimmt, M M und H M ziemlich gestreckt und parallel, die
Entfernung des mittleren Astes zum vorderen und hinteren am Ursprung ziemlich gleich. S M anfangs
(1) Nach Schatz (1. c. 1889) verlauft SC 1 rei in den Vorderrand. Sollte dies nicht ein Irrtum sein, so ist hier, wie in analogen Fallen der
Verwachsung der Costal-Adern, der Verlauf der Subcostalis schwankend. Schatz bildet das Geitider von Aem. lena (falso /eva) ab, uns liegen zur
Untersuchung 6 G,1 OD Aem. amathusia oberthiiri, 1 G Q Aem. lena vor. Bei simtlichen 9 Exemplaren zeigt sich C und S C x verwachsen.
Ferner zeichnet sich nach Schatz die Gattung durch das Fehlen jedweden « Duftapparates » aus, Auch dies kann nicht bestatigt werden, da die
¢ beider Arten im Analfelde des Hinterfligels einen kaum zu iibersehenden Haarbischel tragen, der aus einer Aderfalte hervorragt. Beide gegen die
Angaben von Schatz abweichenden Charaktere werden auch in der Gattungsdiagnose von Moore (1. c. 1895) erwahnt.
30 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
etwas gekriimmt, dann gestreckt, dem Hinterrande folgend und nahe dem Analwinkel miindend. Hinter-
fliigel etwa elliptisch. Vorderrand abgeflacht, Apex leicht gewinkelt, Distalrand vorn gerade, an V M
ganz schwach geeckt, dann abgerundet, Analwinkel wenig markiert, Hinterrand ziemlich gerade, vorn
etwas gelappt. Praecostalis einfach, leicht wurzelwarts gekriimmt, Costalis scharf gekitimmt, schrig in
den Vorderrand einlaufend. Subcostalis anfangs gerade, von der Abzweigung der V D C an nach vorn
aufsteigend und gekriimmt in den Apex auslaufend. V DC ziemlich lang, schrag distalwiarts gestellt,
MDC und HDC fehlen, beziehungsweise erstere in flacher Kriimmung in H R tbergehend. Die
Radiales bilden eine lange, etwas gekriimmte Gabel. Die Medianiaste normal, S M bildet beim o im
Analfelde eine scharfe Ausbiegung, in welcher eine flache Falte mit einem langlichen Dufthaar-
Biischel liegt.
Falter mittlerer Grésse, unscheinbar braun mit verwaschener dunkler Rand-Zeichnung oder mit
weislichen und grauen Langsstreifen und Flachen, iiber deren Lebensweise und Entwicklung nichts
Naheres bekannt ist. Sie gelten als selten.
Schema des Fliigelgeiders : Taf. 2, Fig. 7.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die wenigen Vertreter dieser eigentiimlichen
Gattung leben in Nord-Indien, siidlich bis Ober-Tenasserim absteigend, nérdlich bis in Zentral-China
vordringend, woselbst Ihr Vorkommen etwa unter dem 30. Breitengrad mit Sicherheit bekannt ist.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
1. A2mona amathusia Hewitson.
a, Aemona amathusia amathusia Hewitson.
Clerome amathusia, Hewitson in Trans. Ent. Soc. Lond. (3), Vol. 4, p. 566 (1867).
Aemona amathusia, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, t. Zeuxidia & Amathusia, f. 3, 4 (2) (1868).
Aemona amathusia, WWood-Mason in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 49 (2), p. 176, t. 6 f. 2,2a (non 3, 4) (@) (1880).
Aemona amathusia, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 303, Titelbild f. 2, 2a (&) (1883).
Aemona amathusia, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203 (1887).
Aemona amathusia, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 212, t. 164 f. 1, 1a-e (SO, 2) (1895).
Aemona amathusia, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 196 (part.) (1905).
Nord-Indien : Sikkim, Burma (Khasia-, Naga-, Garrow-Gebirge).
). Aemona amathusia oberthiri Stichel, nov. subsp. (1). — Taf. 4, Fig. 9, 2.
Zentral-China : Siao-Lu (Ta-Tsien-Lu).
2. Aemona pealii W ood-Mason.
Aenona pealii, Wood-Mason in Proc. Asiat. Soc. Bengal, p. 123 (1880).
Aemona pealii, Wood-Mason in Journ, Asiat. Soc. Bengal, Vol. 49 (2) p. 177, t. 6f. 3, 3a (non 5, 6) (1880).
Aemona pealit, amathusia forma pluv.?, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 303, Titelbild
f. 3, 3a (1880).
(1) Aemona amathusia oberthiiré. — Subspecies supra omnino conformiter dilute fumata, alarum anticarum apice, margine externa, striga
obliqua postdiscali fuscis ; posticis strigis duabus obliquis translucentibus, serie arcuum submarginalium fuscorum. Subtus ut supra sed pallidior, posticarum
strigis obliquis binis distinctioribus, interdum serie communi submarginali ocellorum parvorum.
Unterscheidet sich von der typischen Form durch eine gleichmissig fahlrauchbraune Grundfarbe und scharfere Zeichnung. Apex und ein nach
hinten an Breite und Intensitit abnehmender Distalrandstreif \der Saum selbst bleibt schmal hellbraun) des Vorderfliigels schwirzlich. Die den schwiarz-
lichen Anflug schneidenden Adern bleiben mehr oder weniger hell bestaubt, die Conturen des Saumstreifens proximal unscharf und verwischt, in der
Mitte der Aderzwischenriume etwas weiter vortretend. Vom Vorderrand, nahe dem Apex ausgehend, zieht sich eine deutlich autgetragene schwirzliche,
leicht wellige dicke Linie in schriger Richtung gegen den Hinterrand, gegen das Ende schwicher werdend. Auf dem vorderen Teil der hinteren Disco-
cellularis ein braunlicher flacher Bogenstrich. Hinterfliigel mit einer submarginalen Reihe von scharf aufgetragenen schwarzlichen Bogen, die distal von
diesen liegende Fliigelfliche ein Ton dunkler, Saum ganz schmal hellbraun, die 3 Medianiste auffiillig beiderseits schmal weisslich-ockerfarben angelegt.
Unterseits heller, der Schrigstreif des Vorderfliigels scharfer begrenzt und deutlich bis zum Hinterrand, leicht konkav gekriimmt, die proximal angren-
zende Fliche etwas dunkler schattiert. Mitten durch die Zelle zieht sich eine zweite, schwachere, gekriimmte Querlinie. Die leicht nach oben durch-
scheinenden beiden schrigen braunen Querlinien des Hinterfligels schliessen eine etwas dunkler abgeténte Medianfliche ein. Diese Linien laufen ziem-
lich gerade, divergieren jedoch etwas und zwar so, dass sie hinten weiter voneinander liegen als vorn. Beide wenden sich am Ende etwas analwirts. Nahe
dem Saum beider Fligel eine feine braune Linie. Zwischen dieser und dem Medianfelde eine gebogene Reihe von kleinen Ring- oder Augenflecken.
Stets deutlich ausgebildet sind dieselben auf Vorder- und Hinterfliigel zwischen dem mittleren und hinteren Medianast als silberweisser Kern. fein
schwarz unzogen und schmal gelb gerandet. Die iibrigen Fleckchen des Hinterfligels sind mehr oder weniger rackgebildet, manchmal nur als Ringe oder
Punkte vorhanden und fehlen auf dem Vorderfliigel mitunter ganz.
FAM. NYMPHALID2 31
Aemona pealit, Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203 (1887).
Aemona pealit, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 214, t. 165 f. 1, ra (GO) (1895).
Aemona amathusia forma pluv., Doherty in Journ. Asiat. Soc. Beng. Vol. 58, p. 124 (1889) (1).
Aemona amathusia var. peali, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 196, 197 (1905).
Assam.
Oo
. Aemona lena Atkinson. — Taf. 4, Fig. 10, Q.
Aemona lena, Atkinson in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 215, t. 12 f. 1 (1871).
Aemona lena, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 302 (1883).
Aemona lena, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203, t. 65 (als A. leva) (1887).
Aemona lena, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 215, t. 165 f. 2, 2a (0) (1895).
Aemona lena, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 48, S B. p. (18) (2) (1903).
Aemona leva, Kirby, Cat. diurn. Lep. Suppl. p. 714 (1877).
Yunan, Ober-Tenasserim, Burma.
8. GENUS FAUNIS, HUBNER
Faunis. Hiibner (non Faunus Montf., Mollusc 1810), Verz. Schmett. p. 55 (part.) (spec. : F. ewmea =
eumeus) (1816); idem, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 295 f. 3, 4 (spec. : F’. canens) (1822-26).
Satyrus. Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 460 (11) (part.) (spec. : S. gripus = eumeus,
S. arcesilaus) (18109).
Thaumantis. Doubleday, List Ins. Bit. Mus. Lep. Vol. 1, p. 115 {part.) (spec. : T. avcesilaus, ewmeus)
(1844); Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, t. 54 f. 5
(1849), p. 234, 335 (part.) (spec. : T. faunula, T. phaon) (1851).
Drusilla. Erichson in Nova Acta Acad. Leop. Vol. 16, Suppl. p. 401 (spec. : D. phaon) (1834).
Clerome, Westwood (Boisduval M. S.) in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep.
Vol. 2, p. 333 (1851); Chenu u. Lucas in Encycl. Papill. p. 164 (1853); Ménétriés, Cat. Acad.
Imp. St.-Pétersb. Lép. Vol. 1, p. 37 (1855); Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp.
p- 213 (1857); Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 182 (1858); Herrich-Schiafter
in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 18, p. 105 (1864), Vol. 19, p. 89 (1865); Butler, Cat. Lep. Fab.
p- 44 (1869); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 118 (1871); Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10,
p- 143, n° 268 (1875); Distant, Rhop. Malay. p. 80, 428 (1882, 1886); Marshall u. Nicéville,
Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 312 (1883); Haase in Corr. Bl. Iris, Vol. 1, p. 104 (1886),
p- 310 (4888); Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 202 (1887), Vol. 2, p. 188 (1889);
Semper, Schmett. Philipp. p. 68 (1887); Elwes in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 331 (1888); Hagen
in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen. (2), Vol. 7, p. 201 (1890); Kirby Handb. Lep. Vol. 1, p. 197
(1894); Leech, Butt. Chin. Jap. Cor. p. 112 (1894); Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 206 (1895);
Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 255 (1896); Reuter in Acta Soc. Sc. Fenn.
Vol. 22, p. 110 (1896) ; Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 49 (1899); Kirby in Hiibner
u. Geyer. Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 47 (1901); Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic
Soc. n° 41, p. 10g (1904); Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 184 (1905).
Discophora. Ménétriés, Cat. Acad. Imp. St.-Pétersb. Lép. Vol. 1, p. 37 (part.) (spec. : D. avcesilaus)
(1855).
Melanocyma (Subgen.). Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 186 (spec. : M. faunula)
(1) Der Ansicht von Doherty (auch Marshall u. Nicéville sprachen dieselbe Vermutung aus), dass 4. fea/iz eine Zeitform von A. amathusia
ist, vermag ich mich nicht anzuschliessen. Gezetzt auch, dass die rundlichere Fliigelform und die intensiver entwickelten Ozellen (dieses Unterscheidungs- ~
merkmal erscheint iiberdies sehr subjectiv), im allgemeinen dem Charakter einer « seasonal form » entsprechen, so sind in der Zeichnung selbst so auffal-
lige Unterschiede, dass ich vorziehe, die Form vorerst als gute Art zu betrachten. Die Anlage der Bogenzeichnung des Hinterfliigels istnach der Abbildung
flacher, auf der Unterseite ist die distal laufende Querlinie an der hinteren Radialis stumpfwinklig gebrochen, bei amathusia gerade, und die Querlinie des
Vorderfligels liegt vorn etwas weiter vom Apex entfernt. Es sind dies Unterschiede, welche eine Gegenansicht zu begriinden vermégen.
32 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
(1858); M. (Genus), Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 215 (1875); Marshall u. Nicé-
ville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 315, Fussnote (1883); Elwes in Proc. Soc. Lond. p. 272
(1891); Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 210 (1895) ; Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 182
(1905).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, von normaler Grésse, Augen eiférmig gewolbt, nackt.
Stirn und Scheitel kurz behaart. Palpen dicht und glatt beschuppt und behaart. Basalglied kurz, stark
gekriimmt, ventral mit etwas langeren, zottig abstehenden Haaren, Basalfleck an der Innenseite klein,
hellbraun chitinisiert, quer oval, der Wurzel des Gliedes breit anliegend, dicht und gleichmiassig
mit feinen Kegelgebilden besetzt,an den Randern, namentlich unten, mit breiten dunkleren Schuppen
bekleidet. Mittelglied viel langer, etwas verbreitert, aufwarts gebogen, dorsal mit etwas abstehenden
Haaren, ohne eigentliche Schopfbildung. Endglied wiederum sehr kurz, spitz, glatt, etwas nach vorn
gerichtet, den Kopf kaum tiberragend. Antennen diinn, distal kaum merklich verdickt, Endglieder
zugespitzt. Schaft dorsal nackt bis auf die Basalglieder, auf denen einzelne schmale Schuppen stehen;
bei einigen Arten (Ff. ewmeus, F. faunula) ist diese Schuppenbildung etwas reichlicher und auch auf
den folgenden Segmenten, mitunter bis gegen das Ende, finden sich zerstreute Schuppen. Zwei
Ventral-Rillen in guter Ausbildung, von Lingsgraden getrennt und begrenzt, in den Vertiefungen in
gleichmassiger Verteilung feine Harchen und einzelne Borsten. Vorderfliigel fast rechtwinklig drei-
eckig, Vorder- und Distalrand ziemlich stark konvex gekriimmt, Apex rechtwinklig, leicht abgerundet,
Hinterwinkel stumpf, flach abgerundet. Hinterrand beim © an der Basis etwas gelappt, beim Q
schwach gebogen. Subcostalis fiinfiastig, alle Aeste frei, S C1 nahe an der vorderen Zellecke, SC 2 und 3
weit jenseits derselben abgezweigt, alle drei Aeste kurz nach einander in den Vorderrand auslaufend.
S C4 und 5 bilden eine kurze Gabel, ersterer in den Apex, letzterer kurz hinter jenem in den Distalrand
einmiindend. Zelle schmal und lang. V DC sehr kurz, M DC nur wenig langer, H D C dagegen viel
langer, S-férmig gekriimmt und hinten weit gegen den Distalrand vorspringend, wodurch die hintere
Zellecke wesentlich weiter vorgeschoben ist als die vordere. Die Radiales ziemlich gleichmissig flach
gekriimmt, fast parallel, gegen die Miindung nur wenig divergierend. V M proximal stark gekriimmt,
dann leicht geschweift, der hinteren Radialis etwas genihert. MM und H M fast gerade, parallel,
SM mehr oder weniger gebogen, dem Hinterrande folgend. Hinterfliigel fast eif6rmig. Vorderrand
flach, Apex und Hinterwinkel véllig abgerundet, Distalrand leicht konvex, etwas gewellt. Costalis
proximal nach vorn, dann in flacher Kriimmung gegen das distale Viertel des Vorderrandes gerichtet.
Praecostalis einfach, etwas wurzelwarts gekriimmt; SC anfangs gestreckt, bei Abzweigung der V D C
flach winklig geknickt, sodann in scharfer Kriimmung in den Apex auslaufend. V DC kurz, schrag
gestellt, M DC und H DC fehlend, erstere in kurzem Bogen in die hintere Radialis iibergehend. Zelle
schmal, offen, die Mediandste und Submediana in normalem Verlatf, H A ziemlich lang, bei Sectio 2
beinahe bis zum Hinterwinkel reichend.-o der Arten der Sectio Agvoeci mit einem nach vorn gerichteten
Haarbiischel hinter der Mediana, dicht an der Wurzel, und einem zweiten, diinnen, meist sehr verbor-
genen und leicht vergiinglichen Pinsel vorn an der Submediana, der sich, wenn aufgerichtet, in der
Regel iiber den hinteren, stark behaarten Teil des Thorax legt, einigen Arten (N‘ 7-9) aber fehlt. Die
zur Sectio Thauwmaturgi zihlenden Formen haben, ausser dem Haarbiischel an der Wurzel der Mediana,
im Hinterwinkel zwischen I A und S M einen langen Streifen feiner Haare, der im Hinterwinkel auf
einem dunklen Duftschuppenfleck endet.
Diese Gattung besteht aus Faltern mittlerer Grésse von unscheinbarer, meist einfarbig braunlicher
oder weisslicher Oberseite, mitunter mit Binden von weisser oder rétlicher Farbe auf dem Vorderfliigel
und Augen oder Fleckenbildung oder, in einem Falle, mit zickzackformigen Querstreifen auf der
Unterseite.
Schema des Fliigelgedders : Taf. 2, Fig. 8.
FAM. NYMPHALID/ 33
Geographische Verbreitung der Arten. — Das Fluggebiet der Arten erstreckt sich von
Nord- und Hinterindien und dem siidlichen China bis zu den Philippinen und den Sunda-Inseln.
Sectio |. AGROECI
Hinterfliigel beim co mit nur einem nach vorn gerichteten Haarbiischel an der
Subcostalis. Meist einténig braun oder braunlich gefarbte Arten.
Cohors |. PHAONIFORMES
Hinterfliigel unten mit wenigstens swet vollkommen ausgebildeten Augenflecken.
A. Unterseite des Vorderftiigels mit etner steil oder nur schwach gekviimmt von vorn nach hinten laufenden Querlinie.
t. Faunis phaon Erichson.
a. Faunis phaon phaon Erichson.
Drusilla phaon, Erichson in Nova Acta Acad. Leop. Vol. 16, Suppl. p. 401 (277), t. 40 (50), f. 1, 2a (1a) (2) (1834).
Thaumantis phaon, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 337 (1851).
Clerome phaon, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 185, n° 3 (1858).
Clerome phaon, Semper, Schmett. Philipp. Vol. 1, p. 68 (1887).
Clerome phaon, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p 202 (1887).
Clerome phaon, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 49 (1899).
? Clerome phaon. Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41, p. 109 (1904).
%. Forma microps Staudinger.
Clerome phaon var. microps, Staudinger (u. Schatz). Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203 (1887).
Clerome phaon ab, aest. microps, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 49 (1899).
Philippinen : Babuyanes, Luzon. Guimaras. Borneo (?).
6. Faunis phaon luridus Felder.
Clerome lurida, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 460, n° 774 (1866).
Clerome lurida, Semper, Schmett. Philipp. Vol. 1, p. 69, t. 8, f. 19, 20 (1887).
Clerome lurida, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203 (1887).
Clerome phaon lurida, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 49 (1899).
Mindoro.
2. Faunis leucis Felder.
Clerome leucis, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 5, p. 304 (1861).
Clerome leucts, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 460, t. 62, f. 5, 6 (1866).
Clerome leucts, Semper, Schmett. Philipp. p. 69 /1887).
Clerome phaon leucis, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 49 (1899).
Clerome leucis, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 34 (1905).
Mindanao, Bazilan.
3. Faunis gracilis Butler.
Clerome gracilis, Butler in Ann. Nat. Hist. (3), Vol. 20, p. gor, t. 8, f. 7 (1867).
Clerome gracilis, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 341 (1873).
Clerome gracilis, Distant, Rhop. Malay. p. 81, t. 8, f. 1 (1882).
Clevome gracilis, Niceville u Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal. Vol. 64 (2), p. 397 (1896).
Clerome phaon gractlis, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 49 (1899).
Clerome gracilis, Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. no 41, p. 110 (1904).
Clerome gractlis, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 34 (1905).
Malayische Halbinsel, Sumatra, Borneo.
B. Unterseite des Vorderfliigels mit einer stark konvex gekviimmten Mittellinie und meist mit einer schrag
vom Vorder- nach dem Distalvande gevichteten, mehy oder weniger vollstindigen weissen oder weisslichen Querbinde.
4. Faunis menado Hewitson.
a, Faunis menado menado Hewitson. — Taf. 5, Fig. II, 9.
Clerone menado, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3, t. Clerome 1, f. 4, 5 (1863).
Clerome menado, Hopffer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 35, p. 38 (part.) (1874).
34 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Clerome menado, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 202 (part.) (1887).
Clerome menado, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 50 (1899).
Nord-u. Zentral-Celebes.
6. Faunis menado pleonasma Rober.
Clerome pleonasma, Rober in Ent. Nachr. Vol. 22, p. 171 (1896).
Clerome menado pleonasma, Fruhstorfer in Berl, Ent. Zeit. Vol. 44, p. 50 (1899).
Ost-Celebes (Tombugu). ,
c. Faunis menado intermedius Rober.
Clerome intermedia, ROber in Ent. Nachr. Vol. 22, p. 172 (1896).
Clerome menado intermedia, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 50 (1899)
Clerome menado var., Hopffer in Ent. Zeit. Stettin, Vol. 35, p. 38 (1874).
Bangkai, Togian-Inseln.
d. Faunis menado chitone Hewitson.
Clerome chitone, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3, t. Clerome, f. 2, 3 (1863).
Clerome chitone, Snellen in Tijdschr. v. Ent. Vol. 21, p. 11 (1877).
Clerome chitone, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 202 t. 65 (1887).
Clerome menado chitone, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 50 (1899).
a. Forma fruhstorferi Rober. ;
Clerome fruhstorferi, R6ber in Ent. Nachr. Vol. 22, p. 172 (1896).
Clerome menado fruhstorfert, Fruhstorfer in Berl. Ent Zeit. Vol. 44, p. 50 (1899).
Siid-Celebes.
e. Faunis menado sulanus Fruhstorfer.
Clerome menado sulana, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit Vol. 44, p. 49 (1899).
Clerome sulana, Nicéville in Journ. Bombay Soc. Nat. Hist. Vol. 13, p. 165, t. D D. f. 9 (1900).
Sula-Mangoli.
C. Unterseite des Vorderfliigels mit einer von vorn schriig nach dem Distalvande laufenden wetsslichen
oder weissen Querbinde.
5. Faunis sappho Semper.
a. Faunis sappho sappho Semper.
Clerome sappho, Semper in Verh, Nat. Ver. Hamburg Vol. 3, p. 108 (1878).
Clerome sappho, Semper, Schmett. Philipp. p. 69, t. 8, f. 15, 16 (1887).
Clerome phaon (2) sappho, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 34 (1905).
Bohol, Mindanao.
6. Faunis sappho kleis Semper.
Clerome kleis, Semper in Verh. Nat. Ver. Hamburg Vol. 3, p. 109, (sappho var. ?) (1878).
Clerome kleis, Semper, Schmett. Philipp. p. 70, t. 8, f. 17, 18 (1887).
Clerome phaon () kleis, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol, 20, p. 34 (1905).
Camotes, Samar, Panaon, Siargao.
6. Faunis stomphax Westwood.
a. Faunis stomphax stomphax Westwood.
Clerome stomphax, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2) Vol. 4, p. 186, t. 21, f. 3,4 (1858).
Clerome stomphax, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 341 (1873).
Clerome stomphax, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203 (1887).
Clerome stomphax, Snellen in Tijdschr. v. Ent. Vol. 33, p. 291 (1889).
Clerome stomphax, Pagenstecher in Abh. Senckenb. Ges. Vol. 23, p. 406, (1897).
Clerome stomphax, Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41, p. 110 (1904).
Clerome stomphax, nov. subsp., Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 34 (1905).
Borneo, Biliton, Sumatra.
%. Forma besa Hewitson.
Clerome besa, Hewitson, Exot. Butt. Vol, 3, t. Clerome 1, f. 1 (1863).
Clerome besa, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 203 (1887).
Clerome stomphax ab. besa, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 50 (1899).
Clerome besa, Shelford in Journ, Straits Branch Asiatic Soc. n° 41. p. 110 (1904).
Nord-Borneo.
FAM. NYMPHALIDZ® 35
6. Faunis stomphax plateni Staudinger.
Clerome platen, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris); Vol. 2, p. 44 (1889),
Clerome plateni, Semper, Schmett. Philipp. p. 331 (1892).
Clerome stomphax plateni, Fruhstorfer in Berl. Ent, Zeit. Vol. 44, p. 50 (1899).
Palawan.
Cohors 2. ARCESILAIFORMES
Unterseite des Hinterfliigels nur mit einer gebogenen Rethe von weissen oder gelblichen vunden Flecken oder Punkten.
7. Faunis arcesilaus Fabricius.
a. Faunis arcesilaus arcesilaus Fabricius.
Papilio arcesilaus, Fabricius, Mant. Ins. Vol. 2, p. 28, n° 205 (1787).
Papilio arcestlaus, Donovan, Ins. Ind. t. 30, f. 2 (1800-03).
Satyrus arcestlaus, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol.9, p. 497 (1819).
Thaumantis arcestlaus, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep. Vol. 1, p. 15 (1844).
Clerome arcesilaus, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. t. 54*, t. 5 (1849); Vol. 2,
p. 334 (1851),
Clerome arcesilans, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 313 (1883).
Clerome arcestlaus, Distant, Rhop. Malay., p. 428, t. 40 f. 5 (1886).
Clerome arcesilaus, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 207 (part.), t. 162, f. 1, ra-c. (1895).
Clerome arcestlaus, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 51 (part.) (1899).
Clerome arcesilaus, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 183 (1905).
Nord-Indien, Hinter-Indien, Malayische Halbinsel, Sumatra, Bangka.
6. Faunis arcesilaus canens Hiibner.
Faunis canens, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 295 f. 3, 4 (1822-26) (1).
Morpho leonteus, Zinken-Sommer in Nova Acta Acad. Leop. Vol. 15, p. 170, t. 16 f. 14, 15 (1831).
Discophora arcesilaus, Ménétriés, Cat. Acad. Imp. St.-Pétersb. Lép. Vol. 1, p. 37 (1855).
Clerome arcesilaus, Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp. p. 213 (1857).
Clerome arcesilaus, Kirby in Hiibner u. Geyer, Exot Schmett. Neue Ausg. p. 47 (1901).
Clerome arcesilaus caneus. Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 34 (1905).
Java, Bali.
c. Faunis arcesilaus borneensis Fruhstorfer.
Clerome arcesilaus borneensis, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 34 (1905).
Clerome arcesilaus, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 341 (1873).
Clei ome arcestlaus, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. no 41, p. 110 (1904).
Borneo.
d. Faunis arcesilaus niasanus Fruhstorfer.
Clerome arcesilaus niasana, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 50 (1899).
Clerome arcesilaus, Kheil, Rhop. Nias, p. 20 (1884).
Nias
e. Faunis arcesilaus pallidior Hagen.
Clerome arcesilaus var. pallidior, Hagen in Abh. Senckenb. Ges. Vol. 20, p. 331, n. 23 (1902).
Clerome arcestlaus var. pallidior, Hagen in A. Maas, Bei liebenswiirdigen Wilden, Anhang, p. 208 (1902).
Mentawaj-Inseln.
8. Faunis kirata Nicéville (spec. bona ?).
Clerome ktrata, Nicéville in Journ. Bombay Soc. Nat. Hist. Vol. 6, p. 344, t. F f. 3 (1891).
Clerome kirata, Swinhoe in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 276 (1893).
Clerome kirata, Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 255 (1896).
Clevome kirata, Shelford in Journ, Straits Branch Asiat. Soc. n° 41, p. 110 (1904).
Clerome kirata, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 34 (1905).
Sumatra, Malayische Halbinsel, Borneo.
g. Faunis eumeus Drury.
a. Faunis eumeus eumeus Drury.
Papilio eumeus, Drury, Ill. Nat. Hist. Vol. 1, p. 4, t. 2 f. 3 (1773).
Papilio ceumea, Cramer, Pap. Exot. Vol. 2, p. 132, t. 183 f. C, D (1779).
(z) Par Faunis canens Hubner fehlt die Vaterlandsangabe. Das Bild passt wenig auf die typische Unterart, besser auf die Java-Form, welche
ich durch hell ockerbraune Oberseite und verdunkelte Unterseite der Fliigel, hier mit breiter, verloschener, discaler Querbinde auszeichnet. Der Name
mag deswegen, dem Vorschlage Fruhstorfers (1. c. 1905) entsprechend, auf die Java~Rasse Anwendung finden.
36 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Faunis ewmea, Hiibner, Verz. Schmett. p. 55, n° 527 (1816).
Thaumantis eumeus, Doubleday, List Ins, Brit. Mus, Lep. Vol. 1, p. 115 (1844).
Clerome eumeus, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 183 (1858).
Clerome ewmeus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 202 (1887).
Clerome eumeus, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 209 (1895).
Clerome ewmeus, Kershaw in Proc. Ent. Soc. Lond. p. Lvi (Biol.) (1903).
Clerome eumeus, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 183 (part.) (1905).
Papilio gripus, Fabricius, Syst. Ent. App. p. 829, n° 178-9 (1775).
Papilio gripus, Fabricius, Mant. Ins. Vol. 2, p. 28, n° 294 (1787).
Papilio gripus, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 6, p. 77, t. 135 f. 3, 4 (1793).
Satyrus gripus, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 497 (1819).
Papilio decempunctatus, Goeze, Ent. Beitr. Vol. 3 (1), p. 212, n° 32 (1779).
Stid-China : Hongkong, Hainan. Borneo (?) (Moore).
>. Faunis eumeus incertus Staudinger (subsp. dubia) (1).
Clerome eumeus var. incerta, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 302 (1887).
Clerome ewumeus incerta, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 51 (1899).
?Clerome assama, Ch, Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 7, p. 13 (1893).
Tongking, Ober-Burma, Shan-Staaten.
a. Forma moiarum Fruhstorfer.
Clerome eumeus forma moiarum, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 34 (1904).
Clerome ewmeus motavum, Fruhstorfer, ibidem, p. 35 (1904).
Annam.
10. Faunis assamus Westwood.
Clervome assama, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 184 (1858).
Clerome assama, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceylon, Vol. 1, p. 314, n° 296, fig. (1883).
Clerome eumeus var. assama, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 202 (1887).
Clerome assama, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 208, t. 163, f. 1, ra-c (1895).
Clerome eumeus assama, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 51 (1899) (2).
Clerome assama, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 184 (1905).
Assam, Sikkim.
11. Faunis aerope Leech.
a. Faunis aerope aerope Leech.
Clerome aerope, Leech in The Entomologist Vol. 23, p. 31 (1890).
Clerome aerope, Leech, Butt. Chin. Jap. Cor. p. 112, t. 1, f. 4 (1894).
Clerome aerope, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit. Vol. 44, p. 51 (1899).
Clerome eumeus, Bingham in Faun, Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 183 (1905).
Zentral- und West-China.
b. Faunis aerope excelsus Fruhstorfer. — Taf. 5, Fig. 12, °.
Clerome aerope excelsa, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 16, p. 97 (1901).
Nord-Tongking.
Sectio Il. THAUMATURGI
Hinterfliigel beim o mit einem nach vorn gerichteten Haarbiischel an der Subcos-
talis und einem zweiten Haarbiischel nahe dem Hinterwinkel. Unterseite mit
grellen dunklen Zickzackstreifen.
12. Faunis faunula Westwood.
a. Faunis faunula faunula Westwood.
Thaumantis faunula, Westwood (u. Hewitson) in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. Diurn. Lep. t. 54, f. 1
(1849).
Clerome faunula, Westwood in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 234 (185r).
(1) Staudingers mutmassliche Vaterlandsangabe « Philippinen » scheint nicht zutreffend zu sein. H. Fruhstorfer sammelte in Tongking (Than-
Moi, Juni-Juli) eine Hzemzezs-Form, welche auf die Beschreibung der var. zcer/a sehr gut passt, und mag der fiir die Staudingersche Form fraglicher
Herkunft eingefiihrte Name fiir jene Tongking-Rasse Anwendung finden.
(2) #. assamus als Unterart von eves zu behandeln, kann ich mich wegen der ginzlich verschiedenen Zeichnungsanlagen der Unterseite
nicht entsschliesen.
FAM. NYMPHALIDZ® 37
Clerome (Melanocyma) faunula, Westwood in Trans, Ent. Soc. Lond. (2), Vol..4, p. 186, t. 21, f. 2 (1858).
Clerome faunula, Distant, Rhop. Malay. p. 81, t. 8, f. 2 (1882).
Melanocyma faunula, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1, p. 315 (1883).
Melanocyma faunula, Elwes in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 272 (1891).
Malayische Halbinsel, Siam, Cambodia.
6. Faunis faunula faunuloides, Nicéville (subsp. ? aut forma ©).
Melanocyma faunuloides, Nicéville in Journ. Bombay Soc. Nat. Hist. Vol. 9, p. 259, t. N f. 2 (@) (1895).
Melanocyma faunuloides, Moore in Lep.ind. Vol. 2, p. 210, t. 167 f. 1, 1a (Q) (1895).
Melanocyma faunuloides, Bingham in Faun. Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 184 (1905).
Ober-Burma, North Chin Hills.
9. GENUS TAENARIS, HUBNER
Tzenaris. Hiibner, Verz. Schmett. p. 52 (Tanares), Index p. 7 (Tenaris, p. 53, mendum typograph.)
(1816); Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 159, n° 357 (1875); Fruhstorfer in Wien.
Ent. Zeit. Vol. 24, p. 57, 119 (1905).
Tenaris. Herrich-Schafierin Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865); Kirby, Cat. diurn. Lep.
p- 117; Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 120 (= Drusilla) (1877); Haase in Corr.
Bl. Iris, Vol. 1, p. 130, 310 (1886, 1888); Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 191
(1887), Vol. 2, p. 187 (1889); Ribbe in Deusche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2, p. 240 (1889);
Semper, Schmett. Philipp. p. 331 (1892); Kirby, Handb. Lep. Vol. 1, p. 198 (1894); Moore,
Lep. Ind. Vol. 2, p. 212 (1895); Reuter in Acta Soc. Sc. Fenn, Vol. 22, p. 110 (1896);
Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 79 (1897); Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep.
(Iris), Vol. g, p. 108 (1898); Pagenstecher in Zoologica, Vol. 27, p. 93 (1899); Kirby in Hiibner
u. Geyer, Neue Ausg. p. 46 (1g0r); Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41 p. 110
(1904).
Oreas. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. t. 84 (spec. : O. dubia jatva) (1806-16); Oken, Lehrb. Nature.
Vol. I, p. 740 (1815).
Drusilla. Swaison, Zool. Ill. Vol. 1, t. 11 (spec.: D. wrania, horsfieldit) (1820); Doubleday, List Ins. Brit.
Mus. Lep. App. p. 29 (spec. : D. horsfieldit) (1848); Westwood in Doubleday, Westwood u.
Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 334 (1851); White in Voy. Rattlesnake App. p. 390
(spec. : D. mylaecha) (1852); Chenu u. Lucas, Encycl. Papill. p. 165 (1853); Ménétriés, Cat.
Acad. Imp. St.-Pétersb. Lép. Vol. 1, p. 37 (1855); Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind.
Comp. Vol. 1, p. 214 (1857); Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 180 (1858);
C.u.R. Felder inWien. Ent. Mon.Vol. 4, p. roy, 248 (spec. : D. myops, macrops)(1860); Snellen van
Vollenhoven in Tijdschr. v. Ent. Vol. 3, p. 37 (spec. : D. artemis, dioptrica, anableps, diops) (1860),
Vol. 6, p. 131 (spec. : D. diops) '1863); Hewitson in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 51 (spec. : D. domz-
tilla) (1861), Exot. Butt. Vol. 3, t. Drusilla & Hyantis (1862); Herrich-Schaffer in Corr. BI.
Ver. Regensb.Vol. 18, p. 105 (1864); Butler, Cat. diurn, Lep. Fabr. p. 46 (spec. : D. wrania) (1869);
Kirby in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 358 (spec. ead.) (1869); Kirsch in Mitt. Zool. Mus.
Dresden, Vol. 1, p. 120(1877); Godman u. Salvin in Proc. Zool. Soc. Lond. 1878 p. 645 (spec. :
D. catops, myops) ; Ch. Oberthiir in Ann. Mus, Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 508 u. f. (1900).
Morpho. Latreille, Enc. Méth. Zool. Vol. g, p. rz (part.) (1819); Godart (Latreille u.) ibidem, p. 435
(part.) (spec. : M. jairus) (1819); Guérin in Voy. Coquille t. 17 (spec. : M. bioculatus (1829);
Zinken-Sommer in Nova Acta Acad. Lep. Vol. 15, p. 167 (spec. : M. uvania == horsfieldit) (1831).
Hyades, Boisduval in Voy. Astrolabe, p. 157 (spec. : H. uvama = spec. dub., H. indva) (1832);
derselbe, Spec. Gén. Lép. Vol. 1, t. 13 (9 B) f. 1 (spec. : H. horsfieldi) (1836); Blanchard in Hist.
Nat. Ins. Vol. 3, p. 455 (1840); C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 460
38 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
(spec. : H. macrops) (1866); Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. ro, p. 192 (spec. typ. : H. biocu-
latus) (1875); Capronnier in Ann. Soc. Ent. Belg. Vol. 30, p. 6; Fruhstorfer (Sectio £7.) in Wien.
Ent Zeit. Vol. 24, p. 122 (part.) (spec. : T. gorgo, T. microps, T. dimona, T. dina, T. bioculatus)
(1905).
Morphotenaris. Fruhstorfer in Ent. Nachr. Vol. 19, p. 317(spec.: M. schénbergt) (1893), Berl. Ent. Zeit.
Vol. 39, p. 248 (spec. ead.) (1894), Ent. Zeit. Stett. Vol. 55 p. 127 (1894); Rothschild in Novit.
Zool. Vol. 3, p. 92 (spec. : M. nivescens); Grose Smith u. Kirby, Rhop, Exot. Vol. 3, t. Mor-
photen. & Hyantis (spec. ead} (1898).
Morphotzenaris (Sectio). Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 (1905).
Allgemeine Charaktere. — Kopf missig gross, Augen breit eirund gewélbt, nackt. Stirn kurz
behaart. Palpen dicht und glatt beschuppt und behaart, an der Innenseite die Behaarung spiarlicher,
leicht gescheitelt, an der Basis ventral etwas langer und straffer abstehend. Basalglied kurz, stark
gekriimmt, Basalfleck klein, braéunlich chitinisiert, Mittelglied etwa von dreifacher Linge des ersteren,
aufwarts gerichtet, der Stirn anliegend, distal an der dorsalen Seite mit nur spiarlich schopfartig abste-
henden Haaren. Endglied kurz, spitz, deutlich abgesetzt, etwas nach vorn gerichtet, den Kopf tiber-
ragend. Antennen diinn, etwas unter halber Fliigellange, distal kaum merklich spindelférmig verdickt,
Schaft unbeschuppt, die Harchen in den Ventral-Rillen auf der ganzen Flache der einzelnen Segmente
ziemlich gleichmassig verteilt. Thorax und Abdomen schmichtig, an den Einschnitten etwas wollig.
sonst glatt behaart, an den Schulterdecken die Haare etwas dichter aber kaum langer als auf dem Thorax.
Abdomen etwa 3/4 der Fliigellinge. Vorderfliigel etwa rechtwinklig oder stumpfwinklig dreieckig, Vorder-
rand stark gekriimmt, Apex leicht abgerundet, seltener etwas sichelartig vortretend, Distalrand ziemlich
gerade, bei vorgezogenem Apex konkav geschnitten; Analwinkel stumpf- oder rechtwinkhg, etwas
abgerundet, Hinterrand beim ¢ mehr oder weniger geschweift, proximal etwas gelappt, beim Q gerade.
Die Form des Vorderfliigels bei ersterem schlanker, bei letzterem breiter und massiger in der Flache.
Costalis von bedeutender Linge, tiber zwei Drittel des Vorderrandes. S C fiinfastig, simtliche Aeste frei ;
S C 1 in massiger Entfernung proximal vom Zellende abgezweigt, kurz nach der Costalis in den Vorder-
rand auslaufend. S C 2 und 3 dicht beieinander und nachst S C 4 in bedeutender Entfernung, unweit
des Apex, entspringend, sehr kurz, in schrager Richtung und leicht geschweift in den Vorderrand
auslaufend. S C 4 und 5 bilden eine missig lange Gabel, beide in die apicale Rundung einmiindend.
Zelle ziemlich breit, in der Mittellinie gemessen unter halber Fliigellange. Die Radiales fast parallel,
leicht gekriimmt verlaufend, die vordere dicht an der Zellecke entspringend, daher V DC sehr kurz
oder fehlend, M D C gut entwickelt, mehr oder weniger steil schrag nach hinten gerichtet. H DC
bedeutend linger, S-férmig gekriimmt und weit in distaler Richtung vorgeschoben, sodass der hintere
Teil der Zelle den vorderen an Linge bedeutend wberragt. Die drei Medianidste annihernd parallel,
in fast gleichem Abstand von einander, nur H M etwas mehr gekriimmt. S M beim © stark, beim Q
nur leicht geschweift. Hinterfliigel fast kreisrund, Vorderrand etwas abgeflacht, in vdllig gleichmis-
sigem Bogen in den leicht gewellten Distalrand ibergehend, Hinterwinkel ebenfalls gar nicht abgesetzt,
Hinterrand vorn schmal gelappt. Praecostalis kurz, einfach, leicht wurzelwdrts gekriimmt. Costalis
nahe dem Vorderrande ziemlich gestreckt nach vorn aufsteigend, leicht gekriimmt vor der apicalen
Rundung in den Vorderrand auslaufend. S C der C in geringem Abstande folgend, etwas stairker
gekriimmt, in die Rundung des Apex miindend. V D C kurz, meist nahe, seltener etwas entfernter, von
der Fliigelbasis von S C in flach schrager Richtung abgezweigt. M D C nicht besonders abgesetzt,
sondern in kurzer Kriimmung in die hintere Radialis tbergehend. Die Radiales stehen deshalb auf
gemeinschaftlichem Schaft und bilden eine lange, etwas gektiimmte Gabel. Zelle schmal, offen, H DC
fehlt. — GO an der Basis des Vorderfliigels unterseits mit einer seidenglanzenden Reibeflache, auf der
Oberseite des Hinterfliigels mit eimem nach vorn gerichteten starken Haarpinsel dicht hinter der
FAM. NYMPHALIDA: 39
Mediana und nichst der Fliigelwurzel, im Analfeld zwischen H A und S M, sowie zwischen S M
und H M biischelartig oder streifenweise angeordnete Dufthaare.
Falter von mittlerer Grésse, meist etwas tiber dem Durchschnitt der Tagschmetterlinge, Oberseite
in der Regel einténig in weisslichem, grauem oder graubraunem Farbton, der Hinterfliigel bei gewissen
Arten im-Analteil mit einem Augenfleck, welcher auf der Unterseite fiir fast alle Arten charakteristisch
ist, und dem sich in den meisten Fallen ein vorderer, ahnlicher Augenfleck zugesellt; bei einigen Arten
finden sich deren drei oder selten eine Reihe kleinerer Augen. Ueber die biologischen Verhiltnisse vergl.:
Allgemeine Charaktere der Subfamilie p. 6.
Schema des Fiigelgeiders : Taf. 2, Fig. 9.
Geographische Verbreitung der Arten.—Die laenariden sind hauptsachlich Bewohner des
Papua-Gebietes. Ihre eigentliche Heimat ist Neu-Guinea und die benachbarten Inseln, nérdlich erreicht
eine Art die Philippinen-Insel Palawan, westlich ist als Grenze die Siidspitze der Malayischen Halbinsel
und Sumatra anzunehmen, im Siiden die Halbinsel York des Festlandes von Australien, jedoch unter
Ausschluss der kleinen Sunda-Inseln und nach Osten die Salomon Inseln. Die Fundortsangabe einer
Form (anableps) : Otaheiti (Tahiti) (nach Snellen van Vollenhoven) erscheint unzutreffend.
VERZEICHNIS DER ARTEN UND FORMEN
Sectio |. XANTHORINI
Vorderfliigel am Apex nicht sichelartig ausgezogen, Palpen gelb.
Cohors |. HORSFIELDIIFORMES
Vorderfliigel schmal, gegen den Apex fast lanzettlich, Hinterwinkel flach abgerundet, thre Oberseite braun.
Hinterfliigel oberseits mit vollkommen ausgebildetem, gelb geringtem Augenfleck im Analfelde.
I. Taenaris horfieldii Swainson.
a. Taenaris horsfieldii horsfieldii Swainson.
Drusilla horsfeildit (laps., correct. in Addend. : Horsfeild = Horsfield), Swainson, Zool. Ill. Vol. 1, Text zu
t. 11 (1820).
Hyades horsfieldix, Boisduval, Spec. Gén. Lép. Vol. 1, t. 13 (9 B), f. 1 (1836).
Drusilla horsfieldit, Westwood (Doubleday u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep. t. 54, f. 4 (1849), Vol. 2, p. 335 (185r).
Drusilla horsfieldit, Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp. Vol. 1, p. 214 (1857).
Tenaris horsfieldit, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. new ser. Vol. 4, p. 181 (1858).
Tenarts horsfieldii, Staudinger.(u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 195 (1887).
Taenaris horsfieldi horsfieldi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 71, 120 n° 13 (1905).
Morpho urania, Zinken-Sommer in Nova Acta Acad. Leop. Vol. 15, p. 167 (1831).
Java, Palaboan (coll. Oberthiir).
y%. Forma morosa Stichel, nov. form. (1).
West-Java : Soekaboemi.
6. Taenaris horsfieldii birchi Distant (subspec. dubia).
Tenaris bircht, Distant in Ann. Nat. Hist. (5), Vol. 12, p. 241 (1883).
Tenaris bircht, Distant, Rhop. Malay., p. 428, t. 39, f. 7 (1886).
(1) ZT. horsfieldii horsfieldii forma morosa. — Alis supra fuscioribus quam in forma principali; posticis fuscescentibus, margine distali et
proximali brunneis, plaga alba anali indistincte terminata. — Vorderfliigel auf dunklem Hintergrunde fast kastanienbraun. Hinterfligel von der Wurzel an
braunlich, nur die Mediana und deren Aeste ockerfarben angelegt, die Fairbung verdichtet sich nach dem Apex und Distalrande zu und bildet eine unbe-
stimmt begrenzte dunkelbraune Besaumung, welche sich an der proximalen Umrandung des Analauges etwas nach vorn vorschiebt, dann in schattiger
Zerstaubung den Hinterwinkel erreicht und sich langs des Hinterrandes bis zur Fliigelwurzel erstreckt. Im Hinterwinkel, vor der dunklen Besiumung, eine
kleine weisse vorn unbestimmt begrenzte Aufhellung, die indessen vor dem Analauge nicht ausfliesst wie bei der Hauptform und héchstens bis zur Hilfte
des Submedianzwischenraumes aufsteigt. Costalauge ziemlich deutlich durchscheinend, der Kern leicht gelblich angelegt. Unterseite breiter schwarz-
braun besdumt als bei der Hauptform, fast die ganze weisse Medianfliche des Fligels leicht getriibt und mit einzelnen braunlichen Schiippchen durchsetzt,
die sich nach der Fligelwurzel hin zur einem tiefbraunen Schatten verdichten, — Vielleicht Zeitform oder auch Lokalrasse. — 2 co coll. C. Oberthiir,
West-Java, Soekaboemi.
40 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Tenaris birchi, Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris) Vol. 8, p. 256 (1896)
Taenaris horsfieldi biychi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 71, 120 n® 13 (1905).
Malayische Halbinsel : Singapore. West-Sumatra.
c. Taenaris horsfieldii occulta Grose Smith.
Tenaris occulta, Grose Smith in Ann. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 316 (1889).
Tenaris occulta, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Tenar. t. 1, £.5, 6 (1894).
Tenarts occulta, Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic. Soc. n° 41, p. 110 (1904).
Taenaris horsfieldi occulta. Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 71, 120 n° 13 (1905).
Nord-Borneo : Kina-Balu.
d. Taenaris horsfieldii plateni Staudinger (nom. vix conserv.).
Tenaris horsfeldii var. platent, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2, p. 43 (1889).
Taenaris horsfieldi platent, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 71, 120 n° 13 (1905).
Tenaris horsfeldii, Semper, Schmett. Philipp. Vol. 1, p. 331 (1892).
Palawan.
Cohors 2. URANIIFORMES
Vorderfiiigel breit, fast rechtwinklig, beim S vorwiegend braun oder braungrau, beim Q mehr oder weniger weiss aufgehellt.
Hinterfliigel oben weiss mit einem oder zwei deutlich aufgetragenen, gelb geringten Analaugen.
A. Hinterfliigel oben und unten mit einem Auge tm Analfeld.
2. Taenaris urania Linné.
a. Taenaris urania urania Linné.
Papilio uvania, Linné, Syst. Nat. (10), p. 466, no 48 (1758); Mus. Lud. Ulr. p. 225 (1764); Syst. Nat. (12),
Vol. 1 (2), p. 756, n° 60 (1767).
Drusilla urania (Doubleday), Westwood (u. Hewitson), Gen. diurn, Lep. Vol. 2, p. 335 (part.) (1851).
Tenarts wrania, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensburg, Vol. 19, p. 89 (part.) (1865).
Tenaris urania, Aurivillius in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, p. 43 (1882)
Tenaris wrania, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2, p. 240 (1889).
Taenaris urania urania, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 70, 122 n° 21 (part.) (1905).
Papilio cassiae, Clerck (non Linné), Icon. Ins. t. 29 f. 3 (1764).
%. Forma duplex Stichel, nov. form (1).
Ceram.
6. Taenaris urania jairus Cramer.
Papilio jairus, Cramer, Pap. Exot. Vol. 1, p. 9, t. 6, f. A, B (1775); Vol. 2, p. 134, t. 185 f. A-C (1779) (2).
Papilio jairus, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 8, p. 229, t. 218 f. 1-3 (1796).
Morpho jaivus, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 445 (sine cit.) (1819).
Tenaris jaira, Taenaris ]., Hiibner, Verz. Schmett. p. 53, Index p. 7 (1816).
Hyades jairus, Blanchard in Hist. Nat. Ins. Vol. 3, p. 455 (sine cit.) (1840).
Tenaris jairus, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 37, p. 178 (1884).
Papilio marimus, Gmelin, Linné, Syst. Nat. ed. 13, Vol. 1 (5), p. 2289 (1788-91).
Tenaris nysa, Hubner, Verz. Schmett. p. 53 no 493 (1816).
(1) ZT. uvania u. forma duplex. — Alis posticis supra ocello parvo subcostali. — Eine neben der Stammform selten auftretende Aberration, bei
welcher der vordere Augenfleck des Hinterfliigels verkleinert nach oben durchschligt. Die auf der Oberseite entstandene Costal-Ozelle besteht aus einem
schwarzen Fleckchen mit bliulichweissem Kern und ockergelbem Ring.
Man kénnte versucht sein anzunehmen, dass der Originaldiagnose von Pafilio urania Linné «...fosticis ocellis utringue binis » ein solches aber-
ratives Stiick zu Grunde gelegen hat, aber die im Museum reginae Ludoyv. Ulricae zu Drottningholm noch vorhandene Type Linné’s lasst eine
Auslegung der Worte nur in dem Sinne zu, dass der vordere Ozellus nach oben durchscheint (conf. Aurivillius 1. c. 1882).
(2) In Cramers Diagnose von Papilio jairus (l. c. p. 9; 1775) erscheinen die Worte « antici's ocello, subtus duobus » phantastisch, aber nach Ribbe
d. c. 1889) gibt es unter der hellbraunen Stammform der 7. zranéa von Ceram Stiicke mit augenartigen Flecken auf der Unterseite des Vorderfliigels, die
auch nach oben durchschlagen. Wenn also keine Tauschung Cramers vorliegt, eriibrigt nur die Annahme, dass dieselbe Erscheinung auch bei der dunklen
Rasse dieser Art vorkommt und dass der Autor ein solches Stiick im Sinne gehabt hat. Die folgenden Worte der Diagnose : « posticis sesquialtero (nb. ocello) »
lassen keinen Zweifel daran, dass sie aut die Figuren B, C der Tafel 6 (1. c.) einer aberrativen Form mit dem Doppelauge im Analfelde des Hinterfligels
anzuwenden ist, und das Gesamtbild der Fairs benannten Art (bzw. Unterart) wurde dann spater durch Reproduction normaler Stiicke (1779 1. c.)
erganzt.— Die Verschiedenheit dieser tief rauchbraunen, beinahe schwarzen Form vom typischen P. «vavza ist augenfallig; nach Ribbe (l.c. 1899) fliegt
sie neben letzterer auf Ceram, scheint sich aber auf Amboina zu einer konstanten Lokalrasse ausgebildet zu haben (cf. auch Aurivillius 1. c. 1882) und
kommt auf Saparua in ganz gleicher Farbung vor. Es diirfte daher nicht fehlgegriffen sein, diese Form unter Anwendung des Cramerschen Namens als
Subspecies zu behandeln; bereits Herbst (1. c. 1796) gab Amboina als Vaterland fiir . jazrs Cramer an und corrigiert dadurch Cramers irrige Lokalitats-
angabe fur seine Type: « habitut in Indi orienta/i ». Die Vermutung Fruhstorfers (1.c. 1905) dass es sich um Saisondimorphismus handelt, wird durch
Bericht Ribbes (I. c.) nicht bestitigt. Die Forma 70x Kirby ist als Vertreter diusserster Verdunkelung beider Fligel vorzustellen.
FAM. NYMPHALID@® 41
Drusilla uvania, (Doubleday), Westwood (u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 335, 533 (part.) (1851, 1852)
Drusilla urania, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 180 (part.) (1858).
Drusilla uvania «race » jatrus, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 44 (1869).
Tenaris urvania, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 41, p. 91 (1888).
Taenaris uvania urania, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 70 (part.) ; 122 n° 21 (Q ab. jairus) (1905).
%. Forma nox Kirby.
Tenaris nox, Kirby in Hubner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 47, t. 84 (1901).
Oreas dubia jaira, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 84 (1806-19).
Taenaris urania urania ab. nox, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 70; 122 n° 22 (1905).
Amboina, Saparua; Harockoe, Nussa Laut?
e. Taenaris urania hollandi Fruhstorfer (subsp. dubia).
Tenaris uvania hollandi, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 118 (1904).
Taenaris urania holland, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 70; 122 n° 21 (1905).
Buru.
b. Hinterfliigel im Analfelde obersetts mit etnfachem, unten meist mit einem Doppelauge.
3. Taenaris diana Butler.
a. Taenaris diana diana Butler. — Taf. 5, Fig. 13, 2.
Tenarts diana, Butler in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 487 (1870).
Tenaris diana. Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 193 (1887).
Tenarts diana, Pagenstecher in Abh. Senckenb. Ges. Vol. 23, p. 405 (1897).
Taenarts diana diana, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 n° 20 (1905).
Batjan, Ternate.
%. Forma aberrans Staudinger.
Tenaris diana ab. aberrans, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 193 (1887).
Taenaris diana leto ab. aberrans, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 n° 20 (1905).
Batjan, Halmaheira.
»). Taenaris diana diadema Fruhstorfer.
Tenaris diana diadema, Fruhstorfer in Ins. Borse, Vol. 20, p. 357 (1903).
Taenaris diana diadema, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 n® 20 (1905).
Obi.
c. Taenaris diana leto Fruhstorfer (subsp. dubia).
Taenaris diana leto, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 73, 122; (1905).
Halmaheira.
C. Hinterfliigel im Analfelde oben und unten mit einem Doppelauge.
4. Taenaris butleri Oberthiir.
Drusilla butleri, Oberthiir in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 512 (1880).
Tenaris butleri, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 201, t. 64, (Q) (1807).
Taenaris butleri, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120 n° 10 (1905).
Drusilla pleiops, Kirsch in Berl. Ent. Zeit. Vol. 27, p. 164 (1883).
Siid-West-Neu-Guinea: Port Moresby, Insel Yule.
Cohors 3. DOMITILLIFORMES
Vorderfliigel des o& schlank, Apex rund, Hinterrand proximal etwas gelappt. Oberseite
der Fliigel braun, braéunlich oder schwiarzlich, Augenflecke im Analfelde des
Hinterfliigels oben und unten deutlich.
A. Hinterfliigel oberseits mit Doppelauge.
5. Taenaris domitilla Hewitson.
a. Taenaris domitilla domitilla Hewitson.
Drusilla domitilla, Hewitson in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 51, t. 8, f. 3, 4 (1861).
Tenaris domitilla, Herrich-Schaffer in Corr, Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
42 LEPIDOPEERA RHOPALOCERA
Tenaris donutilla, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 194 (part.) (1887).
Tenaris domitilla domitilla, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris Vol. 15, p. 312 (1903).
Taenaris domitilla domitilla, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120 n®°Qg (1905).
Batjan, Ternate. +
b. Taenaris domitilla agrippa, Fruhstorfer.
Tenaris agribpa, Fruhstorfer in Ins. Bérse, Vol. 20, p. 77 (1903).
Tenarts domitilla agvippa, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris Vol. 15, p. 103 (1903) ; Berl. Ent. Zeit. Vol. 49
S. B. p. (1) (1905).
Taenaris domiitilla agrippa, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120 (1905).
Obi.
c. Taenaris domitilla diops Snellen v. Vollenhoven.
Drusilla diops, Snellen van Vollenhoven in Tijdschr. v, Ent. Vol. 6, p. 31, t. 8, f. 3* (1863).
Tenaris diops, Kirby, Cat. diurn, Lep. p. 118 (1871).
Tenaris domitilla diops, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep (Iris), Vol. 15, p. 312 (1903).
Taenaris domitilla diops |- T. diana diops, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120 n° 9; 122 n° 20 (1905).
Morotai, Halmaheira.
B. Hinterfliigel mit einfachem Auge.
6. Taenaris honrathi Staudinger.
a, Taenaris honrathi honrathi Staudinger.
Tenaris honrathi, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192; 195 f. 64 (1887).
Hyades (Tenarts) horsfteldii, Capronnier in Ann. Soc. Ent. Belg. Vol. 30, p. 6 (1886).
Taenaris honrathi honrathi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 25, p. 120 no 11 (1905).
Waigeu.
b. Taenaris honrathi sekarensis Staudinger.
Tenarts honrathi var. sekarensis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 195 (1887).
Taenaris honrathi sekavensis, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 71; p. 120 n© 11 (1905).
Nord-West-Neu-Guinea : Sekar, Sorrone.
5
c. Taenaris honrathi ritsemae Fruhstorfer (1).
Tenaris honrathi ritsemae, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris honrathi ritsemae, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 71, t. 1 (als T. ritsemae) ; p. 120 (1905).
Tenarts honrvathi, Grose Smith in Novit. Zool. Vol. 1, p. 358 (1894).
Tenaris honrathi var, sekavensis, Hagen in Jahrb. Nassau Ver, Naturk. Vol. 50, p. 81 (1897).
Tenaris honrathi var. sekarensts, Rebel in Termes. Fiizetek Vol. 21, p. 374, t. 18, f: 13 (1898).
&%. Forma rebeli Fruhstorfer.
Taenaris honrathi rebeli, Fruhstorfer in Soc, Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Tenarts honrathi rebeli, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 72; p. 120° 11 (1905).
6. Forma auriflua Fruhstorfer.
Taenaris honratht vebeli ab. auriflua, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 72; p. 120 n° 11 (1905).
Y-. Forma sidus Stichel, nov. form. (2).
Nord- und Nord-Ost-Neu-Guinea : Geelvink-, Humboldt-, Astrolabe-Bai.
ad. Taenaris honrathi enomia Fruhstorfer (subsp. dubia).
Taenaris honvathi enomia, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris honrathi enomia, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 72, p. 120 n® 11 (1905).
Sud-Ost-Neu-Guinea : Collingwood-Ba1i.
e. Taenaris honrathi macrophthalma Fruhstorfer (subsp. dubia).
Taenaris honvatht macrophthalmus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 73, p. 120 n° 11 (1905). :
Insel Jobi (Geelvink-Bai).
(1) Von dieser Subspecies befindet sich in der Sammlung des Herrn Ch. Oberthiir ein Hermapbrodit, linke Seite ci, rechte Seite 9.
(2) Z. honrathi ritsemae forma sédus.— Alis anticis subtus ocellatis. — Eine nicht eben selten unter der Hauptform fliegende Aberration, bei
welcher sich auf der Unterseite des Vorderfliigels nahe dem Distalsaum kleine, deutliche Augenflecke zeigen. Im einfachsten Falle tritt ein Auge im
hinteren Medianzwischenraum auf, welches sogar nach oben durchschlagen kann, hierzu tritt manchmal ein zweites Auge in der Gabel von S C 4 und 5
und zwischen diesen eine submarginale Reihe von weissen Punkten ; gleichzeitig schlagt auch der Kern des Costalauges im Hinterfliigel zuweilen nach
oben durch (Zu vergl : Hagen, |. c. 1807). Typ. 1 9 coll. Stichel, Astrolabe-Bai.
FAM. NYMPHALIDZ 43
7. Taenaris onolaus Kirsch.
2. Taenaris onolaus onolaus Kirsch.
Taenaris onolaus, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 122, t. 6, f. 7 (1877).
Taenaris onolaus onolaus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 73, p. 120 n° 12 (1905).
Nord-West-Neu-Guinea : Geelvink-Bai.
6. Taenaris onolaus ida Honrath (nom. vix conserv.).
Tenarts honrathi var. ida, Honrath in Berl. Ent. Zeit. Vol. 33, p. 164 (1889).
Tenaris onolaus, Hagenin Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50. p. 81 (1897).
Taenaris onolaus tdae, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 73, p. 120 n° 11 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
c. Taenaris onolaus saturatior Fruhstorter.
Tenaris onolaus saturatior, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 118 (1904); Soc. Ent. Vol. 19, p. 139
§1905).
Taenaris onolaus saturatior, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 73; p. 120 n° rz (1905).
Tenaris onolaus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192; 196 (1887).
Siid-Ost-Neu-Guinea : Port Moresby.
d@. Taenaris onolaus montana Stichel, nov. subsp. (1).
Drusilla onolaus, Oberthir in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 509 (1880).
Siid-Neu-Guinea : Mont Epa (Papua Golf).
Cohors 4. SELENIDIFORMES
Vorderfliigel des & oben in der Regel braunlich, schlank, mit ruandem Apex, bei lfd.
N° 12 und den Q aller Arten vorherschend weiss, Hinterrand proximal stark
gelappt. Ozelle im Analfelde des Hinterfligels oberseits vorhanden, gelb
umrandet, ausgenommen bei N° 12, dort Ausbildung schwankend.
A. Entfernung des weissen Mittelpunktes in dey Analozelle vom Fliigelrande kiirzey als die halbe Lange des mittleren
Medianastes.
at. Abdomen braun oder grau.
8. Taenaris phoreas \\Vestwood.
Tenaris anableps, Pagenstecher in Zoologica, Vol. 27, p. 92 (1899).
a. Taenaris phorcas phorcas Westwood (2).
Drusilla phorcas, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 182, t. 21, f. 1 (1858).
«) T. onolaus montana.—Minor subsp. typ., alis anticis supra pallidissimis, ocello alarum posticarum minimo.— Kleiner als die typische und die
anderen bennanten Formen. Vorderfligel fahl graubraun, Vorderrand gelblich; Ozelle in Analfeld des Hinterfliigels auf der Unterseite verkleinert, oben
punktartig reduziert, die gelbe Analfarbung blass oder ganz fehlend. Distale Berandung des Fliigels fahlgrau, unscharf und schmal. Vorderfligellange
39-40 mm. 2 GG, Typ. i. c. Ch. Oberthiir, Mont Epa (leg. M. d’Albertis).
(2) Von den fianf benannten Formen der Art sind bei weitherzigster Beurteilung der Trennungscharaktere nur drei als Unterarten zu erhalten.
Die zur Aufstellung der « Arten » oder « Varietaten » benutzten Farbungs- und Zeichnungsanlagen sind simtlich nur relativ und die Collectiv-Species
vereinigt in ihrer Formenbildung diese Charaktere in allen denkbaren Combinationen, unabhiingig von dem Fluggebiet. Nur der allgemeine Eindruck,
den eine groéssere Reihe der Individuen verschiedener Herkunft ausiibt, mag es billig erscheinen lassen, eine Jeilung der Art in drei geographische
Kreise — soweit bekannt — vorzunehmen. Dies jedoch mit der ausdriicklichen Einschrankung, dass die dazu benutzten Merkmale nur fur den Durch-
sehnitt der Pormenbildung massgebend sind und nicht auf jedes einzelne Individuum des betreffenden Kreises (Subspecies) iibertragen werden diirfen,
denn dann warden dieselben zur eiwandfreien Erkennung der Form ofters versagen. Diese Charaktere der drei Subspecies sind etwa folgende :
A. — Analozelle des Hinterfliigels oberseits in der Umrandung mit der braunen Randfarbung des Flugels mehr oder weniger
verflossen. Unten das Auge frei in der weissen Scheibe, die Randfarbung erreicht hier den Hinterwinkel nicht. — Weisse
Zone des Vorderfligels dem Hinterrand meist breit aufsitzend, nach vorn bis iiber den vorderen Medianast ausgedehnt,
namentlich auf der Unterseite . 0. H o-6 A to: cone eneolv BY ore ig | O-s De ae . TL. phorcas phorcas.
#8. — Analozelle des Hinterfligels oben und unten mit der breiten braunen Randfarbung scscaencalie trem weisse ascheise) des
Flagels verkleinert, namentlich beim 9 durch einen breiten braunen Saum am Hinterrande.—Weisse Zone des Vorderfliigels
von geringerer Ausdehnung, eiformig fleckartig .
0 eat atigtt |ttog O . . . . DL. phorcas uranus.
C. — Analozelle ebenfalls meist mit der braunen Randfarbung Gt: Hinterfliigels HUES, senipetene cat ear nterceites =
Weisse Zone des Vorderfliigels getriibt (4) oder hinten vom Fliigelrande abgeriickt (9). . . . . . . . . YQ. phorcas atesta.
Alle drei Formen bilden Uebergange unter sich und in sich mit stark in das Extreme abweichenden Beale ceridcent So gibt es namentlich bei
Form A Exemplare mit stark getriibtem Vorderfligelfleck (26om¢a Fruhst.) und umgekehrt bei Form C solche (9) mit rein weisser Hinterrandszone des
Vorderflagels, welche an Intensitat und Grosse deryenigen best ausgebildeter Exemplare der Form B nicht nachstehen,. Alle andezen von den Autoren zu
Hilfe gezogenen Merkmale, Grosse des Analauges, Starke des gelben Ringes, Form der weissen Scheibe des Hinterfliigels, welche sich in einem bogen-
formig verlangerten Streif vorn mehr oder weniger deutlich an die Peripherie des Costalauges anlegt, sind noch weniger bestiindig, so dass sie an die
erwahnten Charaktere nur bedingungsweise angereiht werden kénnen. — Heimat der Type Westwoods ist unbekannt, Als solche wird derjenige geogra-
phische Kreis angenommen, dessen Angehorige im Durchschnitt am besten mit der Abbildung zu vergleichen sind. Die Vaterlandsangabe Snellen v.
Vollenhovens far 7. axableps : Otahaiti (= Tahiti) erscheint irrig.
Aa LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Tenaris phorcas, Herrich-Schiaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
Tenaris phorcas, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 199 (1887).
Taenaris phorcas phorcas, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120, n® 14 (1905).
Drusilla anableps, Snellen van Vollenhoven in Tijdschr. v. Ent. Vol. 3, p. 4o, t. 1, f. 3, 4, t. 2, f. 7 (1860).
Tenaris phorcas var. anableps, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 199 (1887).
Tenaris anableps, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p- 108 (1898).
Taenaris phorcas anableps, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120, n° 14 (1905).
Drusilla selene, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 120 (1877).
%. forma umbonia Fruhstorfer.
Taenaris phorcas umbonius, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 87 (1905).
Taenaris phorcas umbonia, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120, n° 14 (1905).
Neu-Mecklenburg, Neu-Hannover.
6. Taenaris phoreas uranus Staudinger. — Taf. 5, Fig. 14, ©.
Tenaris phorcas var. uvanus Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 200 (1887).
Tenarts phorcas var, uvanus, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 109 (1898).
Taenaris phorcas wranus, Fruhstorfer in Wien, Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120, n° 14 (1905).
? Tenaris anableps, Salvin u. Godman in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 143 (1877).
Neu-Pommern, Neu-Lauenburg. Insel Duke of York(?).
c. Taenaris phorcas atesta Rebel.
Tenaris atesta, Rebel in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 45, p. 106 (1895).
Tenaris atesta, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 11, p. 109 (1898).
Taenaris phorcas atesta, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120 n° 14 (1905).
Tenaris uranus, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 113, t. 3 (Biol.) (1895).
Salomon-Inseln, Neu-Georgia (Renonga, leg. C. Ribbe).
g. Taenaris scylla Staudinger.
Tenaris scylla, Staudinger (u. Schatz), Exot, Schmett. Vol. 1, p. 193, 200 (1887).
Taenaris scylla, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120 n° 15 (1905).
Drusilla thorcas, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1 (2) p. 121 (1877).
Tenarts dohertyi, Grose Smith in Novit. Zool. Vol. 1, p. 358 (1894); Rhop. Exot. Vol. 2, Tenar. t. 3 f. 3, 4 (1895).
Nordl. Neu-Guinea, Insel Misore (Geelvink-Bai).
bt. Abdomen gelb.
10. Taenaris macrops Felder.
Drusilla macrops, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 4, p. 248 (1860).
Tenaris macrops, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
Hyades macrops, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 460 (1867).
Drusilla macrops (selene var. ?), Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 120 (1877).
Tenaris macrops, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 194 (1887).
Tenaris macrops, Pagenstecher in Abh. Senckenb. Ges. Vol. 23, p. 405 (1897).
Taenaris macrops, Fruhstorfer in Wien, Ent. Zeit. Vol. 24, p. 86 (1905).
Taenaris selene macrops, Fruhstorfer ibidem, Vol. 24, p. 121 n® 17 (1905).
Drusilla selene, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 120 (1877).
%. Forma macropina Fruhstorfer.
Tenaris macrops macropina, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 26 (1904).
Taenarts macropina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 86 (1905).
Taenaris selene macropina, Fruhstorfer ibidem, Vol. 24, p. 121 n® 17 (1905).
Nordl. Molukken (Halmaheira, Ternate, Batjan, Obi), Celebes (1).
B. Entfernung des weissen Mittelpunktes der Analozelle von Fliigelrande mindestens gleich der halben Linge des
mittleren Medianastes.
11. Taenaris selene Westwood (2). — Taf. 6, Fig. 15, &.
Drusilla selene (Hyades s., Boisduval M. S.) (Doubleday), Westwood (u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. Vol. 2,
p. 335 (2) (1851).
(x) Pagenstecher (1897 1. c.) meldet ein Exemplar Z. »zacrops der Ausbeute Kiikenthals (Forschungsreise nach den Molukken und Borneo)
aus Celebes (Minahassa). Es ist die erste und einzige Aufzeichnung uber das Vorkommen von Taenaris auf dieser Insel und wird hierdurch —voraus-
gesetzt dass bei der Fundortsangabe keine Verwechselung vorgekommen — einerseits die Angabe Fruhstorfers, Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 58
erginzt, andererseits aber auch dessen Zweifel an dem Fehlen der Gattung auf der feuchten, den Lebensbedingungen dieser Falter dusserst giinstigen
Waldinsel geklart und bestatigt.
(2) Identitat und Synonymie sind durch Vergleich mit der Type festgestellt. Das Original (Q) « ex museo Boisduval », falschlich bezettelt
N. Guinée, gleicht fast vollkommen der Abbildung von 7. duxwensis Forbes und gehért zu der spiter als 7. gzgas G von Staudinger beschriebenen Art.
Von 7. macrofs ist sedene nicht nur durch andere Lage des Augenfleckes, sondern auch durch morphologische Unterschiede in den Copulationsorganen
FAM. NYMPHALIDA® 45
Tenarts selene, Herrich-Schiaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
Tenaris macrops var. selene, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2, p. 241 (1889).
Taenaris selene selene, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121, n° 17 (1905).
Tenarts buruensis, Forbes, Natur. Wander. p. 411 (1885).
Tenaris buruensis, Waterhouse, Aid Ident. Ins. t. 162 f. 2 (Q) (1886).
Tenaris macrops var. gigas, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 194 (S) (1887).
2. Forma © tetrica Stichel, nov. form. (1)
Ceram, Buru.
12. Taenaris catops Westwood.
a, Taenaris catops catops Westwood.
Drusilla catops, (Doubleday), Westwood (u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 335 (1851), p. 533 (1852).
Drusilla catops (Hyadzs c.), Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 181 (1858).
Tenaris catops, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
Tenaris catops, Ribbe in Corr. Bl. Iris, Vol. 1, p. 82 (1886).
Taenaris catops catops, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 84; p. 121 (1905).
Arru (2).
+. Taenaris catops mylaecha Westwood (subsp. dubia).
Drusilla mylaecha, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 1, p. 175 (1851); Vol. 4, p. 182 (1858).
Drusiila mylaecha, White in Voy. Rattlesnake, App. p. 390, t. 4 f. 3, 4 (Q) (1852).
Drusilla mylaecha, (Doubleday), Westwood (u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. Vol. 2, Addit. p. 533 (1852).
Tenaris mylaecha, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
Taenaris catops mylaecha, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121 (1905).
Insel im Louisiade-Archipel.
c. Taenaris catops westwoodi Staudinger.
Tenaris catops var. westwoodi, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 368 (1893).
Taenarts westwoodt, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, f. 2 (larva) (1905).
Taenaris catops westwoodi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121 n° 16; p. 124 (biol.) (1905).
Drusilla catops, Godman u. Salvin in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 465 (part.) (1878).
Tenaris catops + T. c. var. selene, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 197 (part.) (1887).
Tenaris catops + T.c. var. selene, Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 79 (1897).
Tenaris catops, Rebel in Term. Fiiz. Vol. 21, p. 324 (1898).
Oestliches Neu-Guinea, Nordkiiste : Deutsches Gebiet, Collingwood-Bai.
&
Forma unipupillata Fruhstorfer.
Tenaris westwoodi ab. unipupillata, Fruhstorfer in Soc, Ent. Vol. 20, p. 35 (1905).
Taenarts catops westwoodi ab. unipupillata, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121 n° 16 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
Lo
. Forma mylaechioides Fruhstorfer (nom. vix conserv.).
Taenaris catops mylaechioides, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 83, 121 n° 16 (1905).
Insel in der Collingwood-Bai.
d. Taenaris catops fimbriata Kirby (nom. vix conserv.).
Tenaris fmbriata, Kirby in Ann. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 160 (1889).
Taenaris catops fimbriata, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121 n° 16 (1905).
spezifisch getrennt. Die Vermischung dieser beiden, sowie der Umstand, dass 7. se/ene vielfach verkannt und fur eine Form von 7. cafofs mit nach oben
durchgeschlagener Ozelle des Hinterfligels betrachtet wurde (Staudinger, Kirsch u. a.), hat eine bedenkliche Verwirrung der Begriffe zur Folge gehabt
und auch die Anmerkung Fruhstorters in der Uebersicht der Taenariden, Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121 n. 18, beruht teilweise auf Missverstandnis, weil
gigas & Stgr. sich nomenklatorisch mit selene G deckt.
(x) 7. selene forma tetrica, — Forma feminae, alis anticis fere conformiter ferrugineis, alarum posticarum parte distali late fusca.— Die typische
© — Form der Art besitzt einen breiten weissen Basalteil des Vorderfiiigels, welcherinallmahlicher Abtonung nach vorn, gegen den Apex und Distalrand
braunlich wird, und eine nur schmale braune Besdumung des Hinterfligels; bei der hier benannten Form ist die ganze Fliche des Vorderfliigels ziemlich
gleichmassig hellbraun, nur ein schmaler Hinterrandstreif bleibt weisslich. Der Hinterfliigel ist viel breiter braun besiumt, das Weiss ist verdringt, bis auf
das Basalfeld und einen Streif langs des Hinterrandes, dessen distale Grenze durch den von der braunen Fligelberandung eingeschlossenen Augenfleck
gebildet wird. Es kommen Uebergangsstiicke zur Haupttorm vor, die meisten Exemplare halten jedoch die Mitte zwischen den beiden Extrem-Formen, sind
also reichlicher braun gesdiumt als das Original Westwoods. — Typ. 1 9 i. coll. C. Oberthiir. Ceram (Bomfia).
(2) Westwoods Type « ex museo Boisduval », jetzt in coll. Ch. Oberthiir, ist bezettelt : « N. Irlande », Da das Vorkommen der Art dort bisher,
nicht bestatigt ist, wird der Name der typischen Unterart auf Exemplare derjenigen Herkunft angewendet, welche am besten mit dem Original tberein-
stimmen.
46 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Drusilla catops, Godman u. Salvinin Proc. Zool. Soc. Lond, p. 465 (part.) (1878).
Tenarts catops adriana, Fruhstorfer in Soc, Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris catops adriana, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 83, 121 n° 16 (1905).
Fergusson (D’Entrecasteaux) Inseln, Normanby-Insel.
e. Taenaris catops appina Fruhstorfer.
Tenaris catops appina, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129; Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. r19 (104).
Britisch-Neu-Guinea : Milne-Bai.
f. Taenaris catops kajuna Fruhstorfer (subsp. dubia).
Tenaris catops kajuna, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris catops kajuna, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 84, 121, n° 16 (1905).
Stid-West-Neu-Guinea : Kaju-mera-Bai.
g. Taenaris catops pamphaga Kirsch.
Drusilla pamphagus, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 120 (1877) /1).
Taenaris catops pamphagus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 86, 121 n° 16 (1905).
Drusilla catops, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol, 1, p. 120 (1877).
Drusilla selene, Oberthiir in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 509 (1880).
Tenarts catops var. selene, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 197 (1887).
Tenaris catops laretta, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris catops laretta, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 85, t. 2 (als T. laretta) (1905).
Tenaris catops catanea, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris catops catanea, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 84 (1905).
Nord-West-Neu-Guinea : Kapaur, Sorrong, Geelvink-Bai.
h. Taenaris catops jobina Fruhstorfer.
Tenaris catopsjobina, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris catops jobina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 85, 121 n© 16 (1905).
Insel Jobi in der Geelvink-Bai.
i. Taenaris catops luna Stichel, nov. subsp. (3).
Seleu (Berlinhafen).
}. Taenaris catops selenides Staudinger.
Tenaris catops var. selenides, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 198 (1887).
Taenaris catops selenides, Fruhstorfer in Wien, Ent. Zeit. Vol 24, p. 86, 121 n° 16 (1905).
Waigeu.
k. Taenaris catops fulvida Butler.
Tenaris fulvida, Butler in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 487 (1870).
Tenaris fulvida, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 198 (1887).
Taenaris catops fulvida, Fruhstorfer in Wien. Ent, Zeit. Vol. 24, p. 85; 121 n. 16 (1905).
Mysole, Salawatti (?).
1. Taenaris catops nicasius Fruhstorfer (subsp. dubia).
Taenarts catops nicasius, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 86; 121 n. 16 (1905).
Herkunit fraglich (Ceram ?).
(x) Kirsch griindet diese Form hauptsichlich auf die Bildung des Analaugenfleckes im Hinterfligel. Wenn der Fleck bei der Subspecies zwar
im allgemeinen reichlicher entwickelt ist, so hat dieses Merkmal hier wie bei fast allen anderen als Subspecies aufzufassenden Formen der Art nur neben-
sichliche Bedeutung, weil die Ozellenbildung schwankt und iiberall Exemplare ohne Augenfleck, mit Andeutung eines solchen (auch asymmetrisch in
beiden Fliigeln) oder mit voll entwickeltem Auge auf der Oberseite vorkommen. Die Charakteristica der Subspecies liegen vielmehr in der Ausdehnung
und Intensitat der dunklen Zeichnungen der Fligelrinder, teilweise auch in der Fille der gelben Farbung des Basalfeldes im Hinterfliigel. Aber selbst
diese Merkmale sind so wenig beharrlich und vor allem oft so wenig bemerklicher Natur, dass es als ein gewagtes Unternehmen erscheint, hiernach
uiberhaupt lokalisierte Subspecies aufzustellen. Bei einigen als solche benannten Formen war deren Einfirhung nicht zu rechtfertigen, weil die Nachpri-
tung an der Hand geniigend reichlichen Materials die Unzuiinglichkeit der als charakteristisch angefiihrten Eigenschaften ergab.
(2) Z. catops luna. — Subspecies (?) similis 7. cutops pamphaga ; alarum anticarum margine costali apiceque, alarum posticarum margine distali
latissime fuscis; harum basi vix fulva, ocello anali distinctiore quam fere assolet, fusco-circumducto. — Vorderfligel etwa wie bei 7. c. pamphaga,
Hinterfligel ohne oder nur mit ganz schwachem gelblichen Anflug an der Wurzel, Apicalfeld und Distalrand ungewoéhnlich breit rauchbraun. Diese
Besdumung nach hinten allmahlich etwas verschmilert und spitz im Hinterwinkel auslaufend, jedoch an dem meist kraftig aufgetragenen Analauge bei
Gund © nach vorn schattig verbreitert und an der distalen Halfte der Peripherie der Ozelle zu einer deutlichen dunkelbraunen Berandung verdichtet.
Das Analauge selbst in der Regel grésser und scharfer schwarz gekernt als inirgend einem anderen bekannten Falle, aber auch hier mit Ausnahmen (unter
7 vorliegenden Stiicken ein Exemplar), in denen der Augenfleck ginzlich fehlt; dieses augenlose Stiick ahnelt wiederum 7. cat. westwoodi. — 6 G, rt Q i.
coll. A. Seitz (Frankfurt a. M.) Seleu (Stat.-Ort der deutschen Perlenfischerei, Berlinhafen, Finschkiiste).
FAM. NYMPHALIDA® 47
Cohors 5. MYOPIFORMES
Vorderfliigel in grauen Farbténen, oder mit discaler weisser Authellung, einige Arten
(n° 14, 15) vorherrschend weiss. Analauge des Hinterfliigels nach oben in der
Regel nur unvollkommen durchschlagend ; nahe dem Hinterwinkel unter einem
langlichen Haarbiischel in der Hinterrandzone ein klecksartiger schwarzer
Fleck. Duftschuppenpfanne unter dem Haarpinsel an der Fliigelwurzel schwarz
ausgefiillt.
A. Weisse Fliche des Vorderfliigels, wenn auf dey Obersette sichtbar, wagerecht zum Hintervande.
13. Taenaris tainia Fruhstorfer.
a. Taenaris tainia tainia Fruhstorfer.
Tenaris tainta, Fruhstorfer in Ins. Bérse Vol. 22, p. 36 (1905).
Taenaris tainta, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 36; 119 n. 2 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
6. Taenaris tainia annella Stichel, nov. subsp. (1).
Nordl. Neu-Guinea.
14. Taenaris wahnesi Heller.
a. Taenaris wahnesi wahnesi Heller.
Tenaris wahnesi, Heller in Ent. Nachr. Vol. 20, p. 372 (1894).
Tenaris wahnesi, Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 81 (1897).
Taenaris wahnesi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 124, t. 2 (larva) (1905).
Taenaris wahnest wahnest, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 119 (1905).
Forma gemmata Stichel nov. forma (2).
3. Forma candida Fruhstorfer.
Tenaris wahnesi ad. candida, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 138 (1904).
Taenaris wahnesi ab. candida, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 64; 119 n. 3 (1905).
Forma © tainides Fruhstorfer (nom. vix conserv.).
Tenaris wahnest Q ab. tainides, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 138 (1904).
Taenaris wahnesi 2 ab. tainides, Frutstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 65; 119n. 3 (1905).
ov
Forma hadina Fruhstorfer.
Tenarts wahnesi ab. hadina, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 139 (1904).
Taenarts wahnesi ab. hadina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 65; 119n. 3 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
b. Taenaris wahnesi pelagia Fruhstorfer (subsp. dubia).
Tenaris wahnesi pelagia, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 118 (1904) ; Soc. Ent. Vol. 19, p. 138 (1905).
Taenaris wahnest pelagia, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 66; 119n. 3 (1905).
Humboldt-Bai.
c. Taenaris wahnesi ansuna Fruhstorfer.
Tenaris wahnesi ansuna, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 118 (1904); Soc. Ent. Vol. 19, p. 138 (1905).
Taenaris wahnest ansuna, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 66, p. 119 n. 3 (1905).
%. Forma rafaela Fruhstorfer.
Tenarts vafaela (ansuna ab. ?), Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 138 (1905).
1) 7. tainia annel/a.— Alis anticis fuscescentibus, in margine anali albescentibus; posticis albidis, apice margineque distali late fuscis, ocello
costali, altero anali translucentibus. In hoc pupilla minima nigro-caerulea indistincta, circulo fulvo circumfusa; margine anali fusco, macula valida
oblonga brunnea subanali, parte distali comosa, pallide fulvida; subtus posticis in disco albis, late fusco-circumcinctis, ocellis duobus parvis. —
T. tainia Frahst. hat vermoge der gedrungenen Form des Vorderfligels vermutlich Artrechte. Vorliegende Unterart (?) ist kleiner als die Stamm-
form. Vorderfligel fahl rauchbraun, am Hinterrande, bis zur Submediana, namentlich hinter deren Krimmung nach vorn, weisslich. Hinterfligel breit
dunkelbraun gesdumt, ausgedehnter wie bei der typischen Unterart, ndmentlich vorn, mit reichlicher, fahl ockergelber Behaarung im Submedianzwischen-
raum. Der Kern des hinteren Augenfleckes der Unterseite schligt bei dem vorliegenden Stiick ringartig nach oben durch. Beide Ozellen der Unterseite
wie bei 7. fainia tainia auffallend klein, der schwarze Fond mit schon blauem Halbmonde vor dem weissen Kern. Vorderfligellinge 45 mm., —1 Gy,
coll. Ch. Oberthiir, Nordkiste von Neu-Guinea, zwischen Geelvink- und Humboldt-Bai (W. Doherty leg.).
(2) T. wahnesi wahinesi forma gemmata. — Differt a forma principali alis posticis subtus triocellatis, — Wie die Hauptform, auf der Unterseite
des Hinterfligls aber ein dritter Augenfleck zwischen den beiden Ozellen normaler Sticke. 1 Gt, coll. Thiele, Berlin. Deutsch Neu-Guinea.
48 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Taenaris ab. ansuna vafaela, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 66 (1905).
Taenaris wahnest ansuna ab. rafaela, Fruhstorfer, ibidem, Vol. 24, p. 119 n. 3 (1905).
Jobi (Ansus) in der Geelvink-Bai.
d. Taenaris wahnesi merana Fruhstorfer (subsp. dubia).
Tenaris merana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 118 (1904); Soc. Ent. Vol. 19, p. 138 (1905).
Taenaris wahnesi merana, Fruhstorfer in Wien, Ent. Zeit. Vol. 24, p. 66; p. 119 n. 3 (1905).
Siid-West-Neu-Guinea : Kaju-mera-Bai, Sekar.
¢. Taenaris wahnesi senaria Stichel, nov. subspec. (1). — Taf. 6, Fig. 16, o.
Salawatti.
15. Taenaris rothschildi Grose Smith (spec. dubia).
Tenaris rvothschildi, Grose Smith in Novit. Zool. Vol. 1, p. 358 (1894).
Tenaris vothschildi, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 2, t. Tenar. 2 f. 1-3 (1894).
Taenaris rothschildi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 119, n° 4 (1905).
Tenaris dimona ab. Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 7, p. 109 (1894).
Nord-Kiiste von Neu-Guinea : Humboldt-Bai, Finschhafen.
16. Taenaris dioptrica Snellen van Vollenhoven.
a. Taenaris dioptrica dioptrica Snellen van Vollenhoven.
- 2,
Tenaris dioptvica, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb, Vol. 19, p. 89 (1865).
Tenaris artemis ab, dioptrica, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 197 (1887).
Taenaris dioptrica, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 59 (1905).
Taenaris dioptrica dioptrica, Fruhstorfer, ibidem, p. 119, n° 1 (1905).
Drusilla dioptrica, Snellen van Vollenhoven in Tijdschr, v. Ent. Vol. 3, p. 38, t. 2 f. 2, 3 (1860).
%. Forma licinia Fruhstorfer.
Tenaris hyperbolus licinia, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 118 (1904).
Taenaris dioptrica forma licinia, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 59;.p. 119, n° 1 (1905).
Nord-West-Neu-Guinea : Sorrong, Dorey-Bai.
6. Taenaris dioptrica timesias Kirsch (2).
Drusilla timesias, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 121 (1877).
Tenaris artemis ab. timesias, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 197 (1887).
Taenaris timesias, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 67 (1905).
Taenaris timesias timesias, Fruhstorfer ibidem, Vol. 24, p. 119 (1905).
%. Forma aesculapus Staudinger.
Tenaris hyperbolus var, (ab?) aesculapus Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192; 196 (1887).
Taenaris dioptrica ab. aesculapus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24. p. 61; 119, n° 1 (1905).
Nord-West-Neu-Guinea : Geelvink-Bai, Jobi (Ansus).
c. Taenaris dioptrica onesimides Fruhstorfer.
Tenaris hyperbolus onesimides, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 118 (1904).
Taenaris dioptrica onesimides, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 60; 119 n° 1 (1905).
Sud-West-Neu-Guinea : Kapaur.
d. Taenaris dioptrica onesimus (forma dubia) (3).
Tenaris onesimus, Butler in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 468 (1877).
Tenaris dioptrica (?) onesimus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 64; 119 n° 1 (1905).
Neu-Guinea (? Britisch).
(1) 7. wahnesi senaria.— Alis anticis supra albis, margine costali apiceque anguste, margine anali late fuscis; posticis fuscis, disco, parte distali
albidis, flavescenti comosis, margine anali fusco ocello anali magno subopaco; subtus albis, basi, margine costali et distali anguste fuscis, ocellis tribus,
exterioribus magnis, interiore minore. — Vorderfiigel oben am Vorderrande und am Apex schmal, am Hinterrande, bis zum mittleren Medianast breit
rauchgrau, sonst weiss. Hinterfliigel vorherrschend rauchbraun, nur ein ungewisser Streif vor der Mediana und der Submedianzwischenraum weisslich. In
letzterem lange fahl-ockergelbe Behaarung; nahe dem Rande ein etwas getriibtes Analauge, innen schwarz, mit blaulichweissem Kern, schmutzig ocker-
farben umringt. Unterseite vorherrschend weiss, die briunliche Bestaubung am Hinterrande des Vorderfliigels verschmilert, Berandung des Hinterfliigels
nur am Hinterrande, der Basis und von da bis etwa zur Mitte des Distalrandes, wberall schmal, erhalten, dann nur die Fransen verdunkelt. Costal- und
Analauge gross und vollkommen ausgebildet, letzteres véllig von Weiss umgeben, vorn mit der Andeutung eines kleinen Nebenauges. Vor dem vorderen
Medianast ein dritter, kleinerer aber ebenfalls vollkommen ausgebildeter Augenfleck, ein Merkmal, welches, wie in analogen Fallen, individueller Natur
sein kann. Vorderfliigellange 49 mm. —1 © coll. Fruhstorfer, Salawatti.
(2) Nach dem vorliegenden Original aus dem Dresdener Zoolog. Museum erscheint es unzulissig, 7. ¢2meszas als eigene Art zu behandeln und
noch weniger statthaft, die Form in unmittelbare Verwandtschaft mit 7. cyclops (Seite 50) zu stellen, wie es von Fruhstorfer geschehen ist.
(3) Der Typus dieser Form, um deren Identifizierung sich H. Fruhstorfer bemiht hat, fehlt nach einer Mitteilung desselben am Brit. Museum.
Aus der Beschreibung ist nur ein unsicherer Schluss auf die Zugehérigkeit zu ziehen erlaubt. Der Gleichmissigkeit wegen wird die Wahl Fruhstorfers,
der sich fiir die Anreihung an 7. dopfrica entschied, angenommen, obgleich dies bedenklich erscheint. In die engere Wahl fiir die Identifizierung wiirde
nach der Beschreibung (Q) noch in Frage kommen : 7. myops mazlua und 7. m. kirschz.
FAM. NYMPHALID 49
e. Taenaris dioptrica wattina Fruhstorfer.
Tenaris dioptrica wattina, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 119 (1904).
Taenarts dioptrica wattina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 60; p. 119 nO I (1905).
Salawatti.
7. Taenaris dioptrica amitaba Fruhstortfer.
Tenaris hyperbolus amitaba, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 118 (1904).
Taenarts dioptrica amitaba, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 60; p. 119, n° 1 (1905).
? Tenaris diopirtca, Capronnier in Ann. Soc. Ent. Belg. Vol. 30, p. 6 (1886).
Tenaris hyperbolus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 196 (1887).
Waigeu.
17. Taenaris cyclops Staudinger.
Tenaris cyclops, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 367 (1893).
Tenaris cyclops, Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat, Vol. 50, p. 81 (1897).
Taenarts timesias cyclops, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 68; p. 119 n° 7 (1905).
. Forma agasta Stichel, nov. form. (1). — Taf. 6, Fig. 17, Oo.
TCO OR
- Forma agapetha Fruhstorfer.
Tenarits timesias agapethus, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 138 (1905).
Taenaris timesias agapethus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24. p. 67 (1905).
Taenaris timestas forma agapethus, Fruhstorfer ibidem, Vol. 24, p. 119 (1905).
- Forma ferdinandi Fruhstorfer.
Tenaris dioptrica ferdinand, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 138 (1905).
Taenaris cyclops ab. ferdinandi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 70 (1905).
Taenarts timestas cyclops ab. ferdinandi, Fruhstorfer ibidem, Vol. 24, p. 119 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
1s. Taenaris chionides Godman u. Salvin.
a. Taenaris chionides chionides Godman u. Salvin.
Tenaris chiontdes, Godman u. Salvin in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 611 (1880).
Tenaris chiontdes, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 198 (1887).
Taenaris chionidss chionides, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 119 n° 8 (1905).
Britisch-Neu-Guinea.
%. Forma aroana Frulistorfer.
Tenaris kubaryi aroana, Fruhstorfer in Ins. Bérse, Vol. 18, p. 373 (1901); Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 14
p- 330; Berl. Ent. Zeit. Vol. 47, S. B. p. (20) (1902).
Taenaris chiontdes aroana, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120 n° 8 (1905).
Britisch-Neu-Guinea : Aroa-Fluss.
). Taenaris chionides kubaryi, Staudinger.
Tenaris kubaryi, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris). Vol. 6, p. 365, t. 7, f. 2 (1893); Vol. 7, p. 114
(1894).
Tenaris kubaryi, Hagen in Jahrb, Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 80 (1897).
Taenaris chionides kubaryi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 120 n° 8 (1905).
%. Forma ambigua Stichel, nov. forma (2).
Deutsch-Neu-Guinea.
b. Die weisse Zone des Vorderfliigels hegt schriig vom Vorder- zum Distalrande.
Ig. Taenaris myops Felder.
a. Taenaris myops myops Felder.
Drusilla myops, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 4, p. 109, t. 1, f. 1 (1860).
Tenaris myops, Herrich-Schaffer in Corr, Bl. Ver. Rezensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
(x) T. cyclops forma agasta. — Alis supra paulo saturatius grisescentibus, posticis subtus biocellatis. — Farbton des Vorderfligels und
Besiumung des Hinterfligels oberseits etwas satter grau als bei der Hauptform; Vorderfliigel leicht gelblich getont Hinterfligelunterseite mit je 2 Augen-
flecken. — 1 ¢ coll. C. Ribbe, Dresden. Deutsch Neu-Guinea.
(2) T. chionides kubaryi forma ambigua. — Differt a forma principali alis posticis subtus biocellatis. — Hinterfliigel unterseits mit 2 vollkommen
ausgebildeten Augenflecken, deren hinterer der Hauptform fehlt. Sonst mit dieser iibereinstimmend. — 1 o coll. G. Weymer, Elberfeld; vergl. auch
Hagen |. c. 1897. — Es kommen asymmetrische Bildungen vor dergestalt, dass die eine Hinterfliigelunterseite zwei, die andere nur ein Auge (subcostal)
tragt; ferner gibt es neben der Hauptform Exemplare, bei denen, entsprechend der Forma avoana der vorigen Unterart, das Hinterrandfeld des Vorder-
flagels mehr oder weniger grau verdunkelt ist.
50 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Drusilla selene +- D. catops, Wirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 120 (1877).
Tenaris artemis ab, (var. 2) myops, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 197 (1887).
Tenaris myops, Fruhstorfer in Wien, Ent. Zeit. Vol. 24, p. 61 (1905).
Taenaris myops myops, Fruhstorfer, ibidem, Vol. 24, p. 119 no 5 (1905).
Arru- Inseln.
. Taenaris myops fergussonia Fruhstorfer.
Tenaris myops fergussonia, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 119 (1904).
Taenaris myops fergussonia, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p.62, 119 no 5, t. 2 (als T. fergussonta) (1905),
Drusilla myops, Godman u. Salvin in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 645 (1878).
D’Entrecasteaux Inseln (Fergusson).
%. Forma miscus Fruhstorfer.
Taenaris myops miscus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 62, 119 n° 5 (1905).
Normanby-Insel (Stid-Ost-Neu-Guinea).
c. Taenaris myops mailua Grose Smith.
Tenaris mailua, Grose Smith in Novit. Zool. Vol. 4, p. 313 (1897).
Tenaris mailua, Grose Smith u, Kirby, Rhop. Exot. Tenar. t. 5 f. 12 (1898).
Taenaris mailua mailua Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 119 n° 6 (1905).
Tenaris eichhorni Staudinger M. S.
%. Forma verbeeki Fruhstorfer.
Tenaris verbeeki, Fruhstorfer in Soc, Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris kirschi forma verbeeki, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 63, f. 1 (als T. verbeeki) (1905)
Taenaris myops verbeeki, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 119 n° 5 (1905).
Britisch-Neu-Guinea : Milne-Bai.
d. Taenaris myops kirschi Staudinger.
Tenarts kirschi, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 199 (1887).
? Tenaris kirschi, Kirby in Ann. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 160 (1889).
Taenaris myops kirschi, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 63, 119 n° 5 (1905).
Britisch-Neu-Guinea : Port Moresby.
ec. Taenaris myops rosseli Fruhstorfer.
Taenaris matlua vosseli, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 65, 119 n° 6 (1905).
Rossel-Insel im Luisiade Archipel.
f. Taenaris myops praxedes Fruhstorfer.
Tenaris myops praxedes, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 18, p. 119 (1904).
Taenaris myops praxedes, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 62, 11g n° 5 (1905).
Insel Salawatti (Nord-West-Neu-Guinea).
Cohors 6. ARTEMIDIFORMES
Vorderfliigel oberseits grau oder grau und weiss, Analauge des Hinterfliigels oben,
wenn vorhanden, in der Regel nur unvollkommen durchschlagend. Nahe dem
Hinterwinkel beim o& kein klecksartiger Fleck unter dem Haarkamm, Duft-
pfanne an der Fliigelwurzel mit gelblichem Staub ausgefiillt.
20. Taenaris hyberbola Kirsch (1).
Drusilla hyperbolus, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 122 (1877).
Taenaris dioptrica hyperbolus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 61, 11g n® 1 (1905).
g.. Forma automola Kirsch.
Drusilla aut-molus, Wirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden Vol. 1, p. 122 (1877).
Tenaris hyperbolus ab. automolus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 196 (1887).
Taenaris dioptrica automolus, Frubstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24. p. 61, 119 n° I (1905).
Nord-West-Neu-Guinea : Geelvink-Bai (Rubi, Mum, Jobi).
(1) Z. hyperbola (hyper vlus, Kirsch) und die leicht abiindernde Forma azéumola gehéren ausweislich der aus dem Dresdener Zool. Museum
vorliegenden Originale vermoge der charakteristischen Duttorgane des Hinterfligels nicht in die Verwandtschaft von 7. doftrica, wohin sie von
Fruhstorfer verwiesen sind, sondern in die Artemis-Reihe.
a
FAM. NYMPHALIDA 5r
21. Taenaris artemis Snellen van Vollenhoven (1).
a. Taenaris artemis artemis Snellen van Vollenhoven.
Drusilla artemis, Snellen van Vollenhoven in Tijdschr. Ent. Vol. 3, p. 37, t. 1 f. 1, 2 (1860).
Tenaris artemis, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
Drusilla artemis, Ch. Oberthiir in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 510 (part.) (1880).
Tenaris artemis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 196 (part.) (1887).
Drusilla selene var. artemis +. Drustlla catops, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 120 (1877).
Taenaris artemis artemis, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121, n° 19 (1905).
Tenaris artemis senada, Fruhstorfer in Ins. Bérse Vol. 21, p. 389 (1904).
Taenaris artemis zenada, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 76 (1905).
West-Neu-Guinea : Sorrong, Kapaur.
%. Forma eleusina Fruhstorfer.
Tenaris artemis eleusina, Fruhstorfer in Ins. Borse Vol. 21, p. 389 (1904).
Taenaris artemis ab. eleusina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 76 (1905).
Taenaris artemis artemis ab. eleusina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121 n® 19 (1905).
Sorrong.
6. Taenaris artemis myopina Fruhstorfer. — Taf. 6, Fig. 18, &
Tenaris artemis myopina, Fruhstorfer in Ins. Borse Vol. 21, p. 389 (1904).
Taenaris artemis myopina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 74, 120 n® 19 (1905).
Tenaris artemis, Ribbe in Corr. Bl. Iris Vol. 1, p. 82 (1886).
Tenaris artemis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 196 (1887).
Arru-Inseln.
c. Taenaris artemis ziada Fruhstorfer (subsp. dubia).
Tenaris artemts ziada, Fruhstorfer in Ins. Bérse Vol. 21, p. 389 (2) (1904).
Taenaris artemis ziada, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 76, 121 n° 19 (1905).
Mysole.
d. Taenaris artemis gisela Fruhstorfer.
Tenaris artemis gisela, Fruhstorfer in Ins. BGrse Vol. 21, p. 389, t. 1 (als T. gisela) (1904).
Taenarts artemis gisela, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 74, 121 n© I9 (1905).
Tenaris artemis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 196 (part.) (1887).
%. Forma timesides Fruhstorfer.
Taenaris artemis timesides, Fruhstorfer in Wien, Ent. Zeit. Vol. 24, p. 74 (1905).
Taenaris artemis gisela ab. timesides, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 121 n° 19 (1905).
Waigeu.
¢. Taenaris artemis humboldti Fruhstorfer (nom. vix conserv.)
Tenaris artemis humboldti, Fruhstorfer in Ins. Borse Vol. 21, p. 389 (1904).
Taenaris artemis humboldti, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 77; 121 n° 19 (1905).
? Drusilla myops (selene var.) Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden Vol. 1, p. 122 (1877).
2 Tenaris staudingeri ab. nigricans, Grose Smith in Novit. Zool. Vol 1, p. 584 (nom. nud.) (1894).
Nord-West-Neu-Guinea: Geelvink-Humboldtbai.
%. Forma blandina Fruhstorfer.
Tenaris artemis blandina, Fruhstorfer in Ins. Borse Vol. 21, p. 389 (1904).
Taenarts artemis blandina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 77, 121 n° 19 (1904).
Insel Jobi, neben der Hauptform.
f. Taenaris artemis celsa Fruhstorfer (subsp. dubia).
Tenaris artemis celsa, Fruhstorfer in Ins. B6rse Vol. 21, p. 389 (1904).
Taenaris artemis celsa, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p.75, 121 n. 19 (1905).
? Drusilla artemis, Oberthiir in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 510 (part.) (1880).
? Tenarts artemis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 196 (part.) (1887).
Salawatti (?).
(1) Beziiglich der Aufteilung der Collectiv-Species T. artemis gilt sinngemiiss das bei 7. catops (p 46) und Z. phorcas (p. 43) Gesagte. Hier ist die
Variationsfahigkeit eher noch grésser, die Trennungscharaktere der einzelnen, als Unterarten aufgestellten Formen mitunter so unzureichend und so
unbestandig, dass die Diagnosen den Tatsachen oft wenig oder garnicht entsprechen. Es konnte daher nicht als zweckmissig und zulassig erachtet werden.
die yolle Reihe der benannten Subspecies als solche einzufiihren. Eine Existenzberechtigung war vielmehr nur da anzuerkennen, wo die Erkennungsmerk-
male wesentlich genug erschienen, um mit ihrer Hilfe in einer analytischen Uebersicht die Form als Gesamtheit einer Unterart richtig oder annihernd
richtig erkennen zu kénnen; aber selbst hierbei miissen der Anschauung und Urteilsfahigkeit des cinzelnen noch die weitesten Grenzen gezogen werden,
und das Resultat des Bestimmung nach solchem Schliissel wird ohne Zuhilfenahme von Ortsangaben noch hiiufig ein unbefriedigendes bleiben.
52 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
g. Taenaris artemis staudingeri Honrath.
Tenaris staudingeri, Honrath in Berl. Ent. Zeit. Vol. 33, p. 163, t. 2 f. 2 (2) (1889).
Tenaris staudinger’, Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 80 (1897).
Tenaris staudingert, Rebel in Term, Fiiz, Vol. 21, p. 374 (1898).
Taenaris artemis staudinger’, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 78, 122 n. 19 (1905).
Nord-Kitiste von Neu-Guinea : Humboldt- bis Astrolabe-Bai und 6stlich davon, Luisiaden.
%. Forma nigricans Hagen.
Tenaris staudingert var. nigricans (Staudinger M.S.), Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 80 (1897).
Taenaris artemis staudingeri ab. infumata, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 78, 122 n. 19 (1905).
Astrolabe-Bai.
Gi Forma artemides Fruhstorfer.
Taenaris staudingeri ab. artemides, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 79, 122 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
‘y. Forma eos Heller.
Tenaris staudingert ab. eos, Heller in Ent. Nachr. Vol. 20. p. 375 (1894).
Taenaris artemis staudingeri ab. eos, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 78, 122 n. 19 (1905).
Astrolabe-Bai.
6. Forma limbata Fruhstorfer (nom. vix conserv.).
Taenaris artemis staudingert ab. limbatus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 78, 122 n. 19 (1905).
Astrolabe-Bai : Finschhafen.
o
Forma albicans Hagen.
Tenaris staudingeri var. albicans, Hagen (Staudinger M S.) in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 80 (1897)
Taenaris artemts staudingert ab, albicans, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
). Forma barbata Kirby.
Tenaris barbata, Kirby in Ann. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 161 (1889).
Tenaris barbata, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 2, Tenar. t. 1, f. 1, 2 (1894).
Taenaris artemis affinis ab. barbata, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 n. 19 (1905).
Taenaris staudingert ab, simonetta (3), Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 80 (1905).
x
Astrolabe-Bai, Luisiaden (Rossel-Insel).
7, Forma monops Fruhstorfer.
Taenaris artemis staudingert ab. monops, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 79, 122 n. 19 (1905).
Astrolabe-Bai.
0. Forma opulenta Stichel nov. form. (1).
Astrolabe-Bai.
h. Taenaris artemis jamesi Butler (subsp. dubia) (2).
Tenaris jamest, Butler in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 767, t. 77 f. 4 (@) (1876).
Tenaris jamest, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 198 (1887).
Taenaris artemis jamest, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p- 77, 121 n. 19 (1905).
Siid-Ost-Neu-Guinea : Yule-Insel.
i. Taenaris artemis sticheli Fruhstorfer.
Tenaris sticheli, Fruhstorfer in Ins. Borse Vol. 18, p. 373 (1901); Berl. Ent. Zeit. Vol. 47 S B. p. (20) (1902).
Tenaris sticheli, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 14. p. 330 (1902).
Taenaris sticheli, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, t. 1 (1905).
Taenaris artemis sticheli, Fruhstorfer, ibidem, Vol. 24, p. 121 n. 19(1905).
Britisch-Neu-Guinea.
(1) 2. artemis staudingeri forma opulenta, — Alis posticis subtus ocello anali duplicato. — Im Gegensatz zu der « einiiugigen » Aberration
monops eine Form mit 3 Augen auf der Unterseite des Hinterfliigels. Die Analozelle hat sich verdoppelt und es liegen zwei blau iiberstaubte, schwarze,
weiss gekernte Augen in gemeinschaftlicher gelber Umrandung hinter der Zelle. Vereinzelte Stiicke fahren auch zwischen dem vorderen, einfachen und
dem hinteren Doppelauge im vorderen Medianzwischenraum eine weitere kleinere Ozelle. Die Verdoppelung des hinteren Augenfleckes kann sowohl
nach vorn als auch nach hinten stattfinden; das Nebenauge liegt also entweder im Submedian- oder im mittleren Medianzwischenraum. Typus : r Gi in
coll. Stichel, Deutsch-Neu-Guinea (Astrolabe-Bai) mit Verdoppelung in der Richtung nach hinten, Nebenauge im Submedianzwischenraum.
(2) Die Unterschiede zwischen den Subspecies 7. a. stawdingeriu. 7. a. jamesé sind so unbedeutend (conf. auch Fruhstorfer 1. c. p. 77), dass
die Méglichkeit der Synonymie nahe liegt. Wenn sich die Vermutung bestatigt — es kann dies bislang wegen Mangel an Material von der angeblichen
Heimat der letzteren Form nicht entschieden werden — muss 7. a. stawdingeri der eher benannten Form james? weichen.
FAM. NYMPHALIDA® 53
). Taenaris artemis affinis Kirby.
Tenaris afinis, Kirby in Ann. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 162 (1889).
Tenaris afinis, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 2 Tenar. t. 1 f. 3, 4 (1894).
Taenarts artemis afinis, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 n. 19 (1905).
Taenarts artemis tineutus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 80, 122 n. 19 (1905).
%. Forma electra Fruhstorfer.
Tenaris artemis electra, Fruhstorfer in Ins. Borse Vol. 21, p. 389 (1904).
Taenaris artemis electra, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 75: p. 121 n. 19 t. 1 (als T. electra) (1905).
Luisiade Archipel : Rossel ; Fergusson-Inseln, Woodlark.
k. Taenaris artemis melanops Grose Smith (an spec. bona ?).
Tenaris melanops, Grose Smith in Ann. Hist. (6), Vol. 19, p. 177 (2) (1897).
Tenaris melanops, Grose Smith u. Kirby. Rhop. Exot. Vol. 3, Ten. t. 5 f. 3, 4 (1808).
Taenaris artemis, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 (1905).
Std-Ost-Neu-Guinea.
Cohors 7. BIOCULATIFORMES
Analozelle des Hinterfliigels unten mit vollkommen ausgebildetem blauem Ring oder
mit reichlicher blauer Bestaubung in der schwarzen Scheibe, oben — wenn
vorhanden — vorwiegend blau. N° 22 und 26 beim & mit filzartiger Behaarung
langs der Costalis.
22. Taenaris gorgo Kirsch.
a. Taenaris gorgo gorgo Kirsch.
Drusilla gorgo(T. catops var.), Kirsch in Milt. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 121 (1877).
Tenaris gorgo, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 197 (part.) /1887).
Taenaris gorgo gorgo, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 87 122, n. 23 (1905).
Westliches Neu-Guinea : Kaju-mera-Bai (Stidkiiste), Sorrong, Geelvink-Bai (Nordkiiste).
%. Forma 2 mera Fruhstorfer.
Taenaris gorgo mera, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 88, 122 n. 23 (1905).
Kaju-mera-Bai.
6. Taenaris gorgo danalis Fruhstorfer (subsp. dubia).
Tenaris gorgo danalis, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Tenarts gorgo danalis, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 88, 122 n. 23, t. 2 (als T. danalis) (1905).
Tenaris gorgo, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 192, 197 (part.) (1887).
Insel Waigeu.
c. Taenaris gorgo gorgophone Fruhstorfer.
Tenaris gorgo gorgophone, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris gorgo gorgophone, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 87, 122 n. 23 (1905).
Tenaris gorgo, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 2, Tenar. t. 3 f. 1, 2 (1895).
Tenaris gorgo, Hagen in Jahrb, Nassau. Ver. Nat. Vol. 5o, p. 81 (Biol.) (1897).
Tenaris gorgo, Rebel in Term, Fuiz. Vol. 21, p. 374, t. 18 f. 12 (2) (1898).
Humboldt-Bai, Astrolabe-Bai.
23. Taenaris microps Grose Smith.
Tenaris microps, Grose Smithin Novit. Zool. Vol. 1, p. 358 (1894).
Tenaris microps,’Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Tenar. t. 2f. 4, 5 (1894).
Taenaris microps, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 n. 24 (1905).
Holland.-Neu-Guinea (Humboldt-Bai).
24. Taenaris dimona Hewitson.
a. Taenaris dimona dimona Hewitson.
Drusilla dimona, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3 t. Drusilla & Hyant. f. 3, 4 (1862).
Tenaris dimona, Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89 (1865).
Tenaris dimona, Ribbe in Corr. Bl. Iris, Vol. 1, p. 83 (1886).
54 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Tenaris dimona, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 201 (1887).
Taenaris dimona dimona, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 82, 123 n. 25 (1905).
Arru-Inseln.
ob. Taenaris dimona desdemona Staudinger (1).
Tenaris dimona var. desdemona (part.) -+- T. dimona (part.), Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193,
201 (1887).
Tenaris dimona var. desdemona (part.) + T. dimona (part.), Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2,
p. 143 (1889).
Taenaris dimona desdemona, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 82, 123 n. 25 (1905).
Ceram.
c. Taenaris dimona offaka Fruhstorfer.
Taenaris dimona offaka, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 82, 123 n. 25 (1905).
Tenaris dimona, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 201 (part.) (1887).
Waigeu.
d, Taenaris dimona sorronga Fruhstorfer (subsp. dubia).
Taenaris dimona sorronga, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 81, 122 n. 25 (1905).
West-Neu-Guinea : Sorrong.
cS
. Taenaris dimona kapaura Fruhstorfer.
Tenaris dimona kapaura, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris dimona kapaura, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 81, 122 n° 25 (1905).
Siid-West-Neu-Guinea : Kapaur.
f. Taenaris dimona dimonata Stichel, nov. subsp. (2).
Salawatti.
. Taenaris dimona dinora Grose Smith u. Kirby (1).
og
Tenaris dinova, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 2, Tenar. t. 4 f. 3, 4 (2) (1896).
Taenaris dimona dinora, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 83, 122 n° 25 (1905).
Drusilla dimona, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 122 (1877).
Tenaris dimona var, desdemona, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 201 (part.) (1887).
Tenayis dimona -- T. dimona var., Grose Smith in Novit. Zool. Vol. 1, p. 360 (1894).
%. Forma trita Stichel, nov. form. (1).
Nordkiiste von Neu-Guinea : Humboldt-Bai; Geelvink-Bai ?).
h. Taenaris dimona areia Fruhstorfer (nom. vix conserv.).
Tenaris dimona areta, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 19, p. 129 (1904).
Taenaris dimona aveia, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 82, 123 no 25, t. 2 (als T. aveia) (1905).
Tenaris dimona +- T. d. ab. dinorva, Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 81 (1897).
Tenaris dimona, Rebel in Term. Fiiz. Vol. 21, p. 374 (1898).
Deutsch-Neu-Guinea : Astrolabe-Bai.
25. Taenaris dina Staudinger.
Tenaris dina, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Vol. 7, p. 112 (2), 357 () (1894).
Tenaris dina, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 2, Tenar. t. 4 f. 1, 2 (O) (1896).
Tenaris dina, Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat. Vol. 50, p. 81 (1897).
Taenaris dina, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 123 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
(1) Z. dimona desdemona ist als Varietiit und 7. ¢. dinora als Art nach der Verminderung oder Vermehrung der Augenflecke der Hinter-
fligelunterseite aufgestellt. Die Augenbildung schwankt allgemein derart, dass sie auch Lier als Hilfsmittel zur Aufstellung von Unterarten gar keine oder
nur nebensiichliche Bedeutung hat. Da aber eine allgemeine lokalisierte Entwickelungsverinderung der Gesamtheit der Individuen, zu welcher diese
Formen zu rechnen sind, nicht verkannt werden kann, iibertrigt sich der Name auf diese Gesamtheit als geographische Subspecies, ungeachtet dessen,
dass beispielsweise bei 7. démona dinora die Vermebrung der Ozellenzabl iiber drei, wie sie das Original aufweist, zu den Ausnahmen gehdrt. Die gewohn-
liche Form dieser Unterart mag deshalb als forma ¢vzta gekennzeichnet werden.
(2) T. dimona dimonata. — Alis anticis ut in subspec. typ.; posticis albis apice grisescente, ocello caerulescente uno anali in plaga lata
aterrima, subtus ocellis binis, fusco-circumcinctis, cohaerentibus; basi, apice, margine distali et anali fuscis. — Vorderfiiigel wie 7. ¢mona dimona, aber
Apex des Hinterfliigels nur schwach grau iiberstiubt, Analocelle beim Original einfach, die vordere Ozelle nur als Punkt angedeutet. Auge und Punkt in
einem tief-schwarzen rundlichen Analfeld, welches sich sehr auffallig von der vorderen Distalrandbestiubung abhebt. Hinterfliigelunterseite weisslich,
Umrandung der Costal- und Analozelle zusammengeflossen aber distal zwischen dieser Verschmelzung und der Saumbestiubung noch eine breit dreieckige
Aufhellung. Vorderfligelliinge 39 mm., Typus zr o in coll. Oberthir, Salawatti.
FAM. NYMPHALIDZ: 28)
26. Taenaris bioculata Guérin-Méneville (1).
a. Taenaris bioculata bioculata Guerin-Meéeneville.
Morpho bioculatus, Guérin-Méneville in Duperrey, Voy. Coquille, Ins. t. 17 f. 1 (1830).
Drusilla bioculatus, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3, t. Drusilla & Hyant. f. 1, 2 (1862).
Tenaris bioculatus, Herrich-Schiaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 1y, p. 89 (1865).
Tenaris bioculatus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 201, t. 64 (2) (1887).
Taenaris bioculatus bioculatus, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 89, 123 n° 27 (1905).
Hyades indra, Boisduval Voy. Astrolabe, Lep. p. 158 (1832).
Hyades indva, Guérin-Méneville in Duperrey, Voy. Coquille, Ins. Vol. 2 (2), p. 282 (nach 1832).
Waigeu (1).
6. Taenaris bioculata pallida Fruhstorfer.
Tacnaris bioculatus pallida, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 89, 123 n. 27 (1905).
West-Neu-Guinea : Sorrong, Kaju-mera-Bai.
c. Taenaris bioculata charonides Staudinger.
Tenuris bioculatus var. charonides, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 7, p. 110 (1894).
Tenaris bioculatus charonides, Rebel in Term. Fiz. Vol. 21, p. 374, t. 11 f. 11 (Q) (1898).
Taenaris bioculatus charonides, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 89, 123 n° 27 (1905).
Drusilla bioculata, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1, p. 123 (1877).
Drusilla bioculatus, Oberthiir in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 508 (1880).
Tenaris bioculatus var. chavon, Hagen in Jahrb, Nassau Ver. Nat. Vol. 50, p. 81 (1897).
Nordkiiste von Neu-Guinea : Geelvink-, Humboldt-, Astrolabe-Bai.
d. Taenaris bioculata charon Staudinger.
Tenaris bioculatus var. charon, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 193, 201 (1887).
Tenaris bioculatus charon, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. 89, 123 n° 27 (1905).
Siid-Ost-Neu-Guinea : Port Moresby.
Sectio I]. MELAINARINI.
Vorderfliigel am Apex sichelartig ausgezogen. Palpen weiss, schwarz gesdumt
mit schwarzer Spitze.
;
27. Taenaris schonbergi [ruhstorfer.
a. Taenaris schonbergi schonbergi Fruhstorfer.
Morphotenaris schonbergi, Fruhstorfer in Ent. Nachr. Vol. 19, p. 317 (1893); Berl. Ent. Zeit. Vol. 39, p. 248, t. 17,
f. 3 (g) (1894).
Tenaris schénbergi, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris) Vol. 6, p. 363 (1893).
Tenaris falcata, Staudinger, ibidem, Vol. 6, t. 7, f. 1 (2) (1893).
Taenaris schonbergi schonbergt, Fruhstorfer in Wien Ent. Zeit. Vol. 24, p. 122 n. 22 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
5. Taenaris schoénbergi nivescens Rothschild. ,
Morphotenarts nivescens, Rothschild in Novit. Zool. Vol. 3, p. 92 (1896).
' Morphotenaris nivescens, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 3, t. Morphoten. & Hyant. f. 1 (1898).
Taenaris schénbergi nivescens, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit. Vol. 24, p. r22 (1905).
Britisch-Neu-Guinea.
(x) Trotzdem Guérin-Méneville im Text seiner Bearbeitung des entomologischen Teiles der « Voyage Coquille », |. c. p. 282, den auf der zuge-
horigen Tafel 17, f.x gewahlten Namen Morpho biocnlatus als Synonym zu Hyades indva Boisd. zieht, behilt « d/ocu/atus » Giltigkeit, weil die Tafel
friher (1830) ausgegeben ist, als der Text und als Boisduvals Diagnose von 1. 7dra. (Vergl. Vorwort zum Kapitel « Lepidoptéres », p. 271-273 1. c.) Beide
Autoren geben als Vaterland nur allgemein « la Nouvelle-Guinée » an, Die Abbildung Guérin-Ménevilles (Q) passt gut auf Stiicke von Waigeu. Die
Identitat dieser Form mit der Boisduyalschen Type kann nicht in Zweifel gezogen werden. Da nun in dem Vorwort zur « Faune Entomoloyique de l’Océan
pacifique » nur Sammelberichte aus Offack (Waigeu) und Buru publiziert sind, die « Astrolabe » auf ihrer Reise also das festland yon Neu-Guinea gar nicht
berithrt zu haben scheint, zum wenigsten dort keine Schmetterlinge gesammelt worden sind, so erscheint die Folgerung gerechtfertigt, als Heimat der
typischen Unterart die Insel Waigeu anzunehmen.
56 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
10. GENUS XANTHOTAENIA, WESTWOOD
Xanthotzenia (Subgen.). Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 187 (1858); X. (Gen.).
Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 238 (1871); Distant, Rhop. Malay. p. 82 (1882); Marshall u. Nicéville,
Butt. Ind. Burm.Ceyl. Vol. 1, p. 283 (1883); Haase in Corr. Bl. Iris, Vol. 1, p. 104 (1886); Stau-
dinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 145 (1887); Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett.
Vol. 2, p. 188 (1889); Hagen in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen. (2), Vol. 7, p. 201 (1890); Moore,
Lep. Ind. Vol. 2. p. 216 (1895); Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 255 (1896);
Shelford in Journ. Straits Branch Asiatic Soc. n° 41, p. 111 (1904); Bingham in Fauna Brit.
Ind. Butt. Vol. 1, p. 185 (1905).
Clerome. Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 341 (spec. : C. dbusivis) (1873).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, von missiger Grésse, Augen eiférmig gewélbt, nackt.
Stirn kurz behaart, Palpen kurz und breit, dicht und glatt beschuppt und behaart, an der Innenseite
sparlicher. Basalglied kurz, stark gekriimmt, Basalfleck klein, der Wurzel dicht anliegend, hellbraun
chitinisiert, die Kegelgebilde dicht, lang und gleichmassig; Mittelglied viel langer, aufwarts gerichtet,
dorsal die Haare kammartig abstehend, am distalen Ende fast schopfartig; Endglied kurz und spitz, nach
vorn geneigt, den Kopf nicht iiberragend. Antennen diinn, distal leicht spindelférmig verdickt, die
einzelnen Segmente sehr scharf abgesetzt, an den Laingsgraden der ventralen Seite fast Dornfortsdtze
bildend, in den Ventral-Rillen sparlich aber ziemlich gleichmassig verteilt feine Harchen und einzelne
Borsten, der Schaft dorsal leicht beschuppt. auf den Basalgliedern etwas reichlicher. Vorderfliigel im
allgemeinen Umriss rechtwinklig dreieckig, Vorder- und Distalrand konvex gekriimmt. Apex und Hinter-
winkel rechtwinklig, abgerundet. Hinterrand fast gerade. Costalis kurz, etwa von der Halfte des Vorder-
randes. S C fiinfastig, alle Aeste frei. S C 1 in kurzer Entfernung proximal vom Zellende, S C 2 etwa in
der Mitte zwischen diesem und der Gabelung von SC 4 und 5 abgezweigt, und SC3 in der Mitte zwischen
letzterer und S C 2 auslaufend, alle drei schrag in den Vorderrand miindend. Gabel von SC q4 und 5 kurz,
ersterer laéuft in den Apex, letzterer kurz hinter ihm in den Distalrand. Zelle kurz und breit, etwa von halber
Linge des Fiigels, distal schrig abgeschlossen. V D C sehr kurz, fast verkittmmert, H D C massig lang
entwickelt, etwas in die Zelle einspringend gebogen, M DC doppelt so lang, flach S-férmig gekriimmt
und schréag in den Bug von V M einlaufend. V R stirker, H R flach gekriimmt, im distalen Verlauf
annahernd parallel. Mie Medianiste normal, in gleichmassigem Abstande, SM dem Hinterrande folgend.
— Hinterfliigel eiférmig mit eckig vortretendem Apex. Vorderrand flach, Distalrand fast gerade, nur
hinten konvex gekriimmt und in vélliger Abrundung in den Hinterrand tibergehend. Costalis proximal
nach vorn gerichtet, alsdann in flacher Kriimmung in den Vorderrand unweit des Apex auslaufend.
SC gestreckt, nur bei Abzweigung der V DC leicht eingeknickt. V D C kurz, schrag gestellt, M DC
als solche fehlt, sie geht in kurzer Krimmung in H R iiber, H DC fehlend. Zelle ziemlich breit,
offen. Die Radiales fast parallel, V M nur flach gekriimmt, MM und H M leicht divergierend, SM
gestreckt, H A etwas geschweift, sehr lang. G mit einem kleinen Haarbiischel an der Submediana
nahe dem Hinterwinkel.
Falter mittlerer Grésse, Oberseite braun mit gelber Schragbinde auf dem Vorderfliigel, Unterseite
des Hinterfliigels mit kleinen Augenflecken.
Schema des Flugelgedders : Taf. 2, Fig. 10.
FAM. NYMPHALIDA 57
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Formen der einzigen Art dieser Gattung
bewohnen Hinter-Indien, die Malayische Halbinsel und einige Sunda-Inseln,.
1. Xanthotaenia busiris Westwood.
a. Xanthotaenia busiris busiris Westwood.
Clerome (Xanthotaenia) busiris, Westwood in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 4, p. 187 (1858).
Xanthotaenia busiris, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 238 (1871).
Xanthotaenia busiris, Distant, Rhop. Malay. p. 82, t. 5 f. 7 (1882).
Xanthotaenia busiris, Marshall u. Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl. Vol. 1. p. 285, n. 272 (part.) fig. (1883).
Xanthotaenta busivis, Moore, Lep. Ind. Vol. 2 p. 216, t. 166 f. 1, 1a-c (1895).
Xanthotaenia busiris, Nicéville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 64 (2), p. 397 (1896).
Xanthotaenia busivis, Bingham in Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 185 (1905).
Malayische Halbinsel, Tenasserim, Sumatra; Java (an subspec. ?)
b. Xanthotaenia busiris obscura Butler.
Xanthotaenia obscura, Butler in Ent. Monthly Mag. Vol. 20, p. 54 (1883).
Xanthotaenia obscura, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 145 (bustvis forma ?) (1887).
Xanthotaenia bustris var. obscura, Moore, Lep. Ind. Vol. 2, p. 216 (1895).
Nias.
c. Xanthotaenia busiris burra Stichel, nov. subsp. (1).
Xanthotaenia busiris, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 341 (1873).
Xanthotaenia busivis, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc, no 41, p. 111 (1904).
Borneo.
d. Xanthotaenia busiris polychroma Hagen.
Xanthotaenta polychroma, Hagen in Ent. Nachr. Vol. 29, p. 201 (1898).
Xanthotaenia polychroma, Hagen in Abh. Senckenb. Ges, Vol. 20, p. 331, t. 1 f. 5 (1902).
Mentawej-Inseln.
Zu der vorliegenden Arbeit habe ich mich wiederum der dankenswerten Unterstiitzung insbe-
sondere der Herren Ch. Oberthiir (Rennes), H. Fruhstorfer (Berlin), Dr. A. Seitz (Frankfurt a. M ),
C. Ribbe (Dresden), und J. Réber (Dresden), durch Uberlassung von Vergleichsmaterial zu erfreuen
gehabt. Auch bin ich Herrn Professor Dr. Heller sehr verbunden, welcher mir in zuvorkommender
Weise etliche schwer zu erkennende Originale aus dem Zoologischen Museum zu Dresden zugianglich
machte.
Einen wesentlichen und zugleich den schwierigsten Teil der Arbeit stellt die Gruppierung und
Analysierung der Arten und Formen der Gattung Taenaris dar. Hierbei war der Umstand von Bedeu-
tung und Vorteil, dass die betreffenden Vorarbeiten mit der tibersichtlichen Bearbeitung der Taenaris-
Formen durch H. Fruhstorfer in Wien. ent. Zeit. Vol. 24 zeitlich zusammenfielen. Dies hatte einen
lebhaften persGnlichen wie schriftlichen Meinungsaustausch mit jenem eifrigen und kundigen Lepi-
dopterologen zur Folge, wobei mancherlei Schwierigkeiten und Zweifel tiberwunden und aufgeklart
werden konnten. Zur Hilfe kam dabei, dass eseinerseits dem genannten Autor vergénnt war, die grossen
englischen Sammlungen zu studieren und die Typen von Snellen y. Vollenhoven u. a. zu identifizieren,
andererseits war Verfasser dieses in der Lage, die wichtigsten Originale Westwood-Boisduvals zu
gleichem Zweck aus der Sammlung Ch. Oberthiir vorzulegen. Im allgemeinen konnte die Uebersicht
(1) X. busiris burra. — Minor quam subsp. typica, alis paulo dilucidioribus, fascia flava anticarum breviore, pallidiore. — Die Borneo- Form der
von Malacca beschrieben X. 4vsirés nimmt etwa eine Mittelstufe zwischen der typ. Unterart und X. 6. fo/ychroma ein. Sie ist im Durchschnitt kleiner,
Vorderfligel rundlicher, Hinterfliigel am Apex und Hinterwinkel etwas mehr geeckt. Wurzelfeld des Vorderfliigels und der ganze Hinterfligel heller,
fast fuchsrot. Schragbinde des Vorderfliigels bleichgelb, der im hinteren Medianzwischenraum liegende Endzipfel auffalliger, stufenartig, abgesetzt und
verkurzt, beim © reichlicher als beim G. Auf der Unterseite schneidet das Ende mit der ersten, d. h. proximal verlaufenden dunklen submarginalen
Wellenlinie ab, wabrend es bei der typischen Unterart diese Linie unterbricht und bis fast zum Distalrande geht. Der Subapicalfleck der Vorderfligel-
oberseite in der Regel reiner weiss, namentlich beim Q. Der vordere Augenfleck der Hinterfliigelunterseite meist nach vorn verdoppelt, aber auch ein-
fach zwischen Subcostalis und vorderer Radialis ; in den iibrigen Aderzwischenraumen bis zum hinteren Augenfleck nur weissliche Punkte. Sonst wie die
typische Unterart. — Vorderfligellange ¢ 31-33, © bis 37 mm. — Mehrere G, 9 i. coll. Rober (Dresden) u. Stichel. — Sud-Borneo.
58 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Fruhstorfers mit geringen Ausnahmen sachlich angenommen werden. Wenn von der Reilienfolge der
Gruppierung abgewichen wurde, so geschah dies, weil die Disposition der Analyse bei der Publication
Fruhstorfers bereits vollendet war, und weil es fiir néher liegend erachtet wird, méglichst dltere, bekann-
tere Formen in den Vordergrund zu stellen und diese als Ausgangspunkt fiir eine iibersichtliche Regis-
trierung zu wahlen. Die grosse Reihe der von Fruhstorfer neu benannten Formen bedingte eine sachliche
Nachpriifung, die dank reichlich vorhandenen Materials in den meisten Fallen méglich war. Wenn
hierbei einer Anzahl Subspecies die Anerkennung versagt wurde, so geschah dies mit Riicksicht darauf,
dass die charakteristischen Merkmale sehr unbedeutender und unbestaindiger Natur waren, so dass sie
zur Erkennung der Subspecies als solche in einer analytischen Uebersicht (Bestimmungstabelle), welche
s. Zt. in dem betreffenden Bande des im Auftrage der Preussischen Akademie der Wissenschaften
herausgegebenen Werkes « Das Tierreich » verédffentlicht werden wird, titberhaupt nicht aussreichten
oder nur fiir einzelne Individuen anwendbar waren, die dann als Zustandsformen eingestellt sind (siehe
Fussnoten auf Seite 43, 46, 51). Damit soll aber nicht abgeleugnet werden, dass die meisten Arten der
Gattung lebhaft dazu neigen, an den verschiedenen Lokalitéaten ihres Vorkommens eine mehr oder
weniger vom Typus abweichende und unter sich verschiedene, besondere Entwicklungsrichtung anzu-
nehmen. In manchen Fallen war auch die Morphologie des miannlichen Copulations-Apparates zur
Feststellung der Artrechte und Verwandtschaft von Vorteil,so insbesondere bei der Lésung der Frage
wegen der vermeintlichen Zusammengehérigkeit von T. selene Westw. und T. macrops Feld. sowie von
T. selene mit Formen der Catops-Reihe. (Seite 44, 45.)
Der Feststellung der Synonymie wurde durchweg besondere Sorgfalt gewidmet,; in einigen
Punkten war dieselbe bei den unzulanglichen Angaben der Autoren nicht mit Sicherheit zu ermitteln. Die
Haltlosigkeit einer ratselhaften Art : Zeuxaltis pryevi Butler ist bereits durch H. Fruhstorfer (Seite 22)
festgestellt und die unter dem Namen Zeuxidia marcus Schaller von Kirby, Cat. diurn. Lep. p.116, regis-
trierte Art deckt sich mit Morpho adonis Cram. Q. (Siehe auch Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett.
Vol. 1, p. 189).
Einigen Gattungsnamen jiingeren Datums, welche insbesondere oder ausschliesslich auf Ver-
schiedenheiten der tertidren Geschlechtsmerkmale des & (Duftorgane) oder auf allgemeinen Habitus
begriindet worden sind, konnte eine Berechtigung nicht zuerkannt werden, weil geschlechtliche Kenn-
zeichen zwar ein gutes Mittel zur Art- nicht aber zur Gattungs-Trennung darstellen. Dieses Prinzip
wiirde unter Umstinden dahin fiihren, jeder Art einen besonderen Gattungsnamen zuzuteilen.
Hagen in Westfalen, 17. Juli 1905.
NACHTRAG
Einige, wahrend des Druckes dieses Heftes erschienene Neubeschreibungen machen folgende
Erganzungen ndtig.
GENUS AMATHUSIA, FABRICIUS.
1. Amathusia phidippus Linné.
h. Amathusia phidippus baweanica Fruhstorfer (subsp. dubia),
Amathusia phidippus baweanicus, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 129 (1905).
%. Forma 2 incisa Fruhstorfer.
Amathusia phidippus (2) forma incisa, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 130 (1905).
Bawean.
FAM. NYMPHALID/® 59
?. Amathusia phidippus lombokiana Fruhstorfer (subsp. dubia).
Amathusia phidippus lombokiana, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 130 (1905).
&. Forma orasis Fruhstorfer.
Amathusia phidippus lombokiana forma orasis, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 130 (1905).
Lombok.
2. Amathusia schoénbergi Honrath.
b. Amathusia schénbergi borneensis Fruhstorier.
%. Forma gabriela Fruhstorfer.
Amathusta ochraceofusca gabriela, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 130 (1905).
? Amathusia ochreofusca, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. n° 41, p. 107 (1904).
Stid-Borneo (1).
GENUS THAUMANTIS, HUBNER
I. Thaumantis diores Doubleday.
a. Thaumantis diores diores Doubleday.
Citat-Ergangung :
Thaumantis diores, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 113 (1905).
Golf von Tongking, Tenasserim : Tandong.
2. Thaumantis lucipor \Vestwood.
a. Thaumantis lucipor lucipor Westwood.
Hierzu die Citate unter no 2 (p. 18) ausser den hier unter 2b angefiihrten. Bei der Vaterlandsangabe fallt
« Sumatra » fort.
6. Thaumantis lucipor candika Fruhstorfer (subsp. dubia).
Thaumantis luctpor candika, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 113 (1905).
Thaumantis luctpor, Martin in Berl. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 6 (1890).
Thaumantis |Kringana) lucipor, Niceville & Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal. Vol. 64 (2) p. 395 (1896).
Sumatra.
3. Thaumantis odana Godart.
a. Thaumantis odana odana Godart.
x. Forma 2 pishuna Fruhstorfer.
Thaumantis odana pishuna, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 113 (1905).
. Perak.
6. Thaumantis odana cyclops Rober.
yx, Forma depupillata Fruhstorfer.
Thaumantis odana cyclops forma depupillata, Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 113 (1905).
Siid-Ost-Borneo,
c. Thaumantis odana paramita Fruhstorfer (nom. vix conserv.).
Thaumantis odana nov. subsp., Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 113 (1905).
Thaumantis odana paramita, Fruhstorfer, ibidem, p. 130 (1905).
Hierzu das Citat aus n° 3a, p. 18:
Thaumantis odana, Martin in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 258 (1896).
(Vaterlandsangabe « Sumatra » scheidet bei 3a 1. c. aus.)
Sumatra.
4. Thaumantis noureddin Westwood.
c. Thaumantis nourreddin chatra Fruhstorfer.
Thaumantis noureddin chatra Fruhstorfer in Soc. Ent. Vol. 20, p. 113 (1905).
Nord-Borneo (2).
(x) «Borneo » als Vaterlandsangabe bei A. schinbergi sch. forma ochraceofusca (p. 12) und Citat A. ochreofusca Shelford daselbst sind hier-
durch wegfallig. Die Frage ob O. ochraceofusca neben A. schinbergi als Sonderart zu halten ist, muss vorerst unentschieden bleiben.
(z) Die Form der Art aus Nord-Borneo scheint eine besondere Lokalrasse zu vertreten, deren & sich, ausweislich eines Exemplares der Samm-
lung des Zoologischen Museums in Berlin, durch eine sehr auffallige wolkig-ockerfarbene Submarginalbinde des Vorderfligels auszeichnet, im ibrigen
aber dieselben Merkmale tragt wie 7. noureddin sultanus m. Sollte sich eingangs erwahnte Annahme nicht bestitigen, so hat der Name 7. 2, chatra
Fruhstorfer, obwohl spater aufgestellt aber friiher gedruckt, Priorititsrechte.
60 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
ALPHABETISCHES INHALTSVERZEICHNIS
(Synonyma sind kursiv gedruckt.)
A. TRIBUS, SECTIONES, COHORTES, GENERA
Seite.
Aemona. 290 Morphotaenaris
Aglaura . 19 Morphotenarts .
Agroeci. 33 Myopiformes .
Amathyrsia . 7
Amathusia. 7, 58 Nandogea
Amathusia . 13, 19 Nandoges
Amathusiidi 7
Amathuxidia . 13 Oreas.
Amaxidia 19
Arcesilaiformes . 35 Perakaniformes .
Artemidiformes . 50 Phaoniformes
Ategana 10 Phidippiformes .
Poliodermi
Bioculatiformes . 53 Pseudamathusia
Camadeviformes. 27 Satyrus .
Clerome . 29, 31, 56 Selenidiformes
Stichophthalma .
Discophora . 31 Stictophthalmia
Domitilliformes . 41 Stictoptalma
Drusilla . ost, Sy Syntegana.
Epixanthi . 18 Taenaridi .
Taenaris
Faunis . 31 Tenaris .
Thaumantias
Glaucopteroti. 21 Thaumantis
Glaucostilbi 17 Thaumantis,
Thaumaturgi .
Horsfieldiiformes 39 Thauria.
Howquiformes 28 Thoraessa
Hyades . 37
Uraniiformes .
Kringana 16
Xanthorini.
Melainarini 55 Xanthotaenia .
Melanocyma 31
Mitocerus 8 Zeuxaltis
Moera 8. 19 Zeuxamathusia.
Morphindra. 24 Zeuxidia
Morpho .
EO LOS
19, 26, 37
FAM. NYMPHALID 61
B. SPECIES, SUBSPECIES, FORMAE
Seite. Seite.
aberrans, Taenaris diana dianaforma . ... . 41 ARMS, TAME ANS 5 5 5 ¢ ¢ 4 0 5 6 51
aberrans, Taenaris dianalefoab. . . . ... . 41 GAAS, IEGRETES (COSHH) 5 6 3 6 6 6 2 3 o oeiy 98
AGATE, INS GHA A 6 6 6 6 6 6 5 oo SC 41 CSOT) KOTTOM tes og 3 eg py) & She og leera ae & US 36
adriana, Taenaris (Tenaris) catops . of dat ss 46 assama, Gleyomeeumeus(var.) . . .. .. . . 36
adustata, Amathusia phidippus phidippus forma. . 11 ASSEMG, EMIT, o 6.0 6 0 68 51a 6 6 0 © 36
adustatus, Amathusia phidippus. . . . ... . II EMOSIB, US 5 6 5 6 4% 0 6 6 oe oe 44
Geno e, ems (QGON) 5 so} 6 5 5s 6 6 Quo 36 BUSSE, IMAEMENIS INOS. 5 5 s 0 5 6 » So 44
SEMIS, IMS, AEA 2 5 so co o o co 5 Oo 8 36 anne, Zauesclia (WOT). co 4 9 6 0 0 o 6 23
aesculapus, Taenaris dioptrica timesias forma (ab.). 48 aurelia, Zeuxidia (Amawidia) aurelia. . . . . . 23
aesculapus, Tenaris hyperbolus var. . 48 EMME, AUR 5 5 5 0 0 0 9 5 0 8 23
atmniswhacnanistaltem isi a tence Ene fs 53 aureliana, Amaxidia aurelius var. . SAS oo eee 23
AMINISs Tenariss ie Us Wo, eee ee Gt 53 aureliana, Zeuxidia (Amavidia) aurelia . . . . . 23
agapetha, Taenariscyclopsforma. . .... . 49 aurelius, Amathusia (Amaxidia, Morpho, Papilio, Zeu-
agapethus, Taenaris (Tenaris) timesias (forma) . . . 49 KGaA fees get, eae ST tay ae ere ae 23
agasta, Taenariscyclopsforma ...... . 49 auriflua, Taenaris honrathirebeliab. . . . . . 42
agrippa, Taenaris (Tevaris) domitilla. . . . . . 42 auriflua, Taenaris honrathiritsemae forma. . . . 42
albicans, Taenaris artemis staudingeri forma (ab.) . 52 automola, Taenaris hyperbolaforma. . . .. . 5o
albicans, Tenaris staudingeri var.. . . . . . . 52 automolus, Taenaris (Drusilla) . . .. . .. . 50
Glsyis, DAGUMANLS, Van sh, 23 eRe J oute fuged See) automolus, Taenaris dioptrica . . . .. .. . 50
aliris, Thauria (Morphindra, Thaumantis). . . . . 25 automolus, Tenavis hyperbolusab.. . . . . . . . 5o
alirisssbhatiniasalirismie: ume ys) =) lest As) gor care eet 25
amathusia, Aemona (Clerome) Seat co hae ad tia 30 barbata, Taenaris artemis afintsab. . . . . . . 52
amathusia, Aemonaamathusia. . ..... . 30 barbata, Taenaris artemis staudingeri forma. . . 52
ambigua, Taenaris chionides kubaryi forma . . . 49 barbatarw le a1a'sa aes e mee re a 52
amethystina, Zeuxidia amethystus. . . ... . 21 baweanica, Amathusia phidippus. . . ... . 58
aMmetyStisZeuxiGlalcien = erly.) lowe st each Ae 21 baweanicus, Amathusia phidippus . . .... . 58
amethystus; ZeUXIdIaAS, 5 6 rie el se ee 21 besa Clevomeoag 04) oN Pee wetness eacueetr ian 34
amethystus, Zeuxidiaamethystus. . ..... 21 ERE), CERO? SONNE BI, 5 og 5 « 56 5 » © © 34
amitaba, Taenaris dioptrica. . . . ..... 49 besa, Faunisstomphax stomphax forma. . . . . 34
amitaba, Tenaris hyperbolus . . . . . ... . 49 binghami, Amathusia phidippus . . .... . II
amythaon, Amathuxidia (Amathusia) . 14 binghami, Amathusia phidippus forma . ... . II
amythaon, Amathuxidia amythaon 14 binghami, Amathusia phidippus phidippus forma
anableps, Tenaris (Drusilla) 44 bioculata, Taenaris.
anableps, Tenaris phorcas var. 44 bioculata, Taenaris bioculata
andamanensis, Amathusia phidippus. II bioculata, Drusilla.
andamanensis, Amathusia taenia . Il bioculatus, Taenaris bioculatus.
annella, Taenaris tainia 47 bioculatus, Tenaris (Drusilla, Morpho)
ansuna, Taenaris (Tenaris) wahnesi 47 birchi, Taenaris horsfieldii
appina, Taenaris (Tevaris) catops . 46 birchi, Tenaris
arcestlaus (Clerome, Discophora) ; . 35 blandina, Taenaris (Tevaris) artemis .
arcesilaus, Faunis (Clerome, Papilio, Satyrus, Thau- blandina, Taenaris artemis humboldti forma .
mantis) 35 boisduvalii, Zeuxidia
arcesilaus, Faunisarcesilaus - ...:-.:. .. . 35 borneensis, Amathusia sch6nbergi (schonberg?).
areia, Taenaris (Tenaris) dimona 54 borneensis, Faunis (Clerome) arcesilaus .
aroana, Taenaris chionides chionides forma 49 burra, Xanthotaenia busiris .
aroana, Taenaris (Tenaris) kubaryt. . . 49 buruensis, Tenaris.
artemides, Taenaris artemis staudingeri forma 52 busiris, Xanthotaenia (Clerome) .
artemides, Taenaris staudingeri ab. 52 butleri, Taenaris (Drusilla, Tenaris)
artemis, Dyusilla selene var. 51
artemis, Taenaris (Drusilla, Tenaris) . 31 camadeva, Stichophthalma (Morpho, Thaumantis). .
62 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
camadeva, Stictophtalma (Stictophthalmia) .
camadeva, Stichopthalma camadeva .
camadevoides, Stichophthalma.
camadevoides, Stichophthalma camadeva
cambodia, Stichophthalma (Thaumantis).
candida, Taenaris (Tevavis) wahnesi ab.
candida, Taenaris wahnesi wahnesi forma .
candika, Thaumantis lucipor
canens, Faunis .
canens, Faunis arcesilaus
caneus, Clerome arcesilaus
cassiae, Papilio
catanea, Taenaris (Tezaris) catops .
catops, Taenaris (Drusilla, Tenaris)
catops, Taenaris catops
catops, Tenaris(Drusilla) . . . . ....
celebensis, Amathusia phidippus .
celsa, Taenaris (Tenaris) artemis
charon, Taenaris bioculata .
charon, Tenaris bioculatus (var.).
charon, Tenaris bioculatus var.
charonides, Taenaris bioculata.
charonides, Taenaris (Texaris) bioculatus (var.)
chatra, Thaumantis noureddin .
chionides, Taenaris (Tezaris)
chionides Taenaris chionides
chitone, Clerome .
chitone, Faunis (Clevome) menado .
coriotincta, Amathusia phidippus phidippus forma.
cyclops, Taenaris (Tezaris) .
cyclops, Taenaris timesias
cyclops, Thaumantis odana (var.) .
danalis, Taenaris (Tenaris) gorgo .
decempunctatus, Papilio .
depupillata, Thaumantis odana cyclops forma
desdemona, Taenaris dimona (var.) . .
desdemona, Tenaris dimona var.
diadema, Taenaris (Tevaris) diana.
diana, Taenaris (Tevaris).
diana, Taenaris diana . ’
dilucida Amathuxidia (Amathusia) .
dilucida, Amathuxidia .
dilucida, Amathuxidia amythaon . 5
diluta, Amathusia phidippus phidippus forma
dilutus, Amathusia phidippus
dimona ab., Tenaris .
dimona, Taenaris (Drusilla, Tenaris) .
dimona, Taenaris dimona
dimona, Tenaris\(Drusilla). 2 2 2. 2 .
dimonata, Taenaris dimona .
dina, Taenaris (Tenaris)
dinora, Taenaris dimona .
45, 46,
51
dinora, Tenaris
dinora, Tenaris dimona ab
diops, Taenaris (Tezaris) domitilla.
diops, Texaris (Drusilla)
dioptrica, Taenaris (Drusilla, Tenaris)
dioptrica, Taenaris dioptrica
dioptrica, Tenaris. . . .
dioptrica, Ten.tris artemis ab..
diores, Thaumantis (Nandogea) .
diores, Thaumantis diores
dohertyi, Tenaris .
dohrni, Zeuxidia.
domitilla, Taenaris (Tenaris) :
domitilla, Taenaris (Tenarvis) domitilla
doubledaii, Zeuxidia . . . .
doubledayi, Zeuxidia. .
duplex, Taenaris urania urania forma
etchhorni, Tenarts.
electra, Taenaris (Tenaris) artemis. .
electra, Taenaris artemis affinis forma
eleusina, Taenaris (Tezaris) artemis (ab.)
eleusina, Taenaris artemis artemis forma
enomia, Taenaris (Tevaris) honrathi .
eos, Taenaris artemis staudingeri forma (ab.) .
eos, Tenaris staudingeri ab. .
eumea, Faunis (Papilio).
eumeus Clerome .
emeus, Faunis (Clerome, Papilio, Thaumantis)
eumeus, Faunis eumeus .
excelsa, Clerome aerope .
excelsus, Faunis aerope
falcata, Tenaris
faunula, Faunis (Clerome, Melanocyma, Thaumantis) . 36.
faunula, Faunis faunula .
faunuloides, Faunis faunula .
faunuloides, Melanocyma Rens a
ferdinandi, Taenaris cyclops forma (ab.)
ferdinandi, Taenaris timestas cyclops ab.
ferdinandi, Tenaris dioptrica .
fergussonia, Taenaris (Texaris) myops
fimbriata. Taenaris catops
fimbriata, Tenaris :
friderici, Amathusia piidipeee)
friderici, Amathusia phidippus sean ey
fruhstorferi, Clerome. . .
fruhstorferi, Clerome menado .
fruhstorferi, Faunis menado chitone forma .
fruhstorferi, Stichophthalma.
fruhstorferi, Stichophthalma louisa
fulvida, Taenaris catops
fulvida, Tenaris .
fusca, Stichophthalma .
gabriela, Amathusia schénbergi borneensis forma .
gabriela, Amathusia ochraceofusca. . . .
gemmata, Taenaris wahnesi wahnesi forma.
gigas, Tenaris macrops var.
gisela, Taenaris (Tenaris) artemis .
gorgo, Taenaris (Drusilla, Tenaris).
gorgo, Taenaris gorgo.
gorgo, Tenaris. . . . .
gorgophone, Taenaris (Tenaris) gorgo
gracilis, Clerome phaon .
gracilis, Faunis (Clerome). . . . . .
gripus, Papilio (Satyrus).
hadina, Taenaris (Tenaris) wahnesiab. .
hadina, Taenaris wahnesi wahnesi forma . .
hainana, Nandoges . . .
hainana, Thaumantis diores .
hollandi, Taenaris (Tenaris) urania
honrathi, Taenaris (Hyades, Tenaris) .
honrathi, Taenaris honrathi .
honrathi, Tenaris. . . .
honratht, Zeuxidia
horsfetldt:, Drusilla
horsfieldt, Taenaris horsfieldi . Som €
horsfieldii, Taenaris (Drusilla, Hyades, Tenaris)
horsfieldii, Taenaris horsfieldii .
horsfieldit, Zeuxidia. . .
howqua, Stichophthalma .
howqua, Stichophthalma :
howqua, Stichophthalma howqua .
humboldti, Taenaris (Tenarts) artemis
hyperbola, Taenaris
hyperbolus, Drusilla (Tenaris) .
hyperbolus, Taenaris dioptrica .
ida, Taenaris onolaus .
ida, Tenaris honratht var.
tdaz, Taenaris onolaus .
incerta, Clerome eumeus var. .
incertus, Faunis (Clerome) eumeus. zi
incisa, Amathusia phidippus baweanica forma
tndra, Hyades .
infumata, Taenaris artemis staudingeri ab..
insularis, Amathusta amythaon var. .
insularis, Amathuxidia (Amathusia) amythaon
intermedia, Clerome .
intermedia, Thauria
intermedia, Thauria aliris
intermedius Faunismenado. . .
jaira, Oreas dubia.
Seite
(SS STS tS) tS eS
O © W WD WW WW H
os)
oO
FAM. NYMPHALID/
jaira, Taenaris ( Tenaris)
jairus, Taenaris urania . . ;
jairus, Tenaris (Hyades, Morpho, Papilio). .
jamesi, Taenaris artemis .
jamesi, Tenaris .
jobina, Taenaris (Tezaris) catops
kajuna, Taenaris (Tenavis) catops .
kapaura, Taenaris (Tevayis) dimona
kirata, Faunis (Clerome)
kirschi, Taenaris myops
kirschi, Tenxaris
kleis, Clerome .
kleis, Clerome phaon .
kleis, Faunis sappho
klugtus, Morpho (Thaumantis)
kubaryi, Taenaris chionides. .
kubaryi, Tenaris .
kihni, Amathusia
kihni, Amathusia phidippus
laretta, Taenaris (Tenarvis) catops
lathyi, Thauria aliris
lena, Aemona.
leonteus, Morpho
leto, Taenaris diana
leucis, Clerome phaon
leucis, Faunis (Clerome)
leva, Aemona. . . .
licinia, Taenaris dioptrica dioptrica forma.
licinia, Tenaris hypirbolus .
limbata, Taenaris (Tearis) artemis staudingeri forma
limbatus, Taenaris artemis staudingeri ab.
lombokiana, Amathusia phidippus
louisa, Stichophthalma (Thaumantis) .
louisa, Stichophthalma howgua var.
louisa, Stichophthalma louisa
lucida, Amathuxidia amythaon.
lucipor, Thaumantis (Kringana).
lucipor, Thaumantis lucipor.
luna, Taenaris catops .
lurida, Clevome. .
luvida, Clerome phaon
luridus, Faunis phaon.
luxeri, Zeuxidia .
luxerii, Zeuxidia. . .
luxerii, Zeuxidia .
luxerii, Zeuxidia luxerii
luxerrvei, Zeuxidia
macrophthalma, Taenaris honrathi
macrophthalmus, Taenaris honrathi .
macropina, Taenaris (Tewarvis) macrops .
64 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Seite.
macropina, Taenaris macropsforma. ... . . 44
macrops, Taenaris (Drusilla, Hyades, Tenaris) . . . 44
TACOS, WMS SHI?» o 2 6 6 6 6 0 a 0 44
TAMA, IWeeMERNS THAI 5 5 o 56 6 6 6 5 6 6 50
MOEKIIDE,, WEEMS WHOIS 5 6 o 6 9 0 5 0 6 G 50
TALI AMMLLCI:OVISHERT EME le Ye ici 2s et 5o
TES, ZOE 50 0 5 ‘5 6 6 416 lo 6 O10 2 58
TROT) IAGHO > 6 5 5 8 © 8 3D 9 Db oO 8 40
masina, Amathusia (Pseudamathusia) . . . . . . 12
TMASOMI, ZANE: 5 gf '5 a 0 6 le 0 Dp 6 66 21
masoni, Zeuxidiaamethystus . ...... . 21
mathildawstichophthalmayy yey ce) ue eel) chen 28
mathilda, Stichophthalma louisa . Ss Se ANS es 28
melanopswhaenarisjartemisy-) 9) esl) 53
MAAMODS UGA 5 oo o 6 ¢ oo DB 53
menado, Faunis (GUAGHB)) 0 bo 4 6 5 4616 ‘5 33
menadowhHaunissmenadowey ey) Gey ee eae 33
menado var., Clerome . auth br lhe as at AD 34
WOE, ALVES CKOIGEKC) G 5 5 5 Oo Oo A 0 53
mera, Taenaris gorgo gorgoforma ..... . 53
merana, Taenaris (Temavis) wahnesi . . . .. . 48
microps, Clerome phaonvar.(ab.). . . ... . 33
microps, Faunisphaon phaon forma. . ... . 33
Trios, WAGMENS (IKMES))5 55 o a otc los 53
MICS, WASMENS WHOIS 5 5 6 6 56 6 6 Oo O 5o
miscus, Taenaris myops fergussonia forma. . . . 50
MOlaLUmenCleromeeumMeUS.. 9) ss) ne 36
moiarum, Fauniseumeusincertus forma . .. . 36
monops, Taenaris artemis staudingeri forma (ab.) . 32
morosa, Taenaris horsfieldii horsfieldii forma. . . 39
MONE, ICE ONO 5 6 5 6 5 co 6 6 o 43
mylacchaww) yustllal(dheants)\n me 45
DAylACElA, WacmeEnims CAMS 5 5 5 o 4 0 6 0 Oo 45
mylaechioides,Taenaris catops. . ..... . 45
mylaechiodes, Taenaris catops westwoodi forma. . 45
myopina, Taenaris(Tevavis) artemis. . . . . . 51
THOS, DRS 56 6 5 8.09.0 6 » 8 6 6, oeleh ok
myops, Taenaris (Drusilla) . . . oe EMR bay 49
myops;Maenarisimyops:. = «9. = - = - ‘ 49
KOS, ORCAS CGS Gs 5 5° 8 S 6 oo) oe 50
matuna, Amathusia perakana. . . . .... . 12
BEND, AGU 5 2 & 59 6 8 6 2 9 89 6 oD 22
Menmoxeniotichophthalmargesie) ue ay) 28
niasana, Amathusia phidippus. . ...... II
niasana, Cleromearcesilaus . . . . .. .. - 35
MACHINE, INAS Eos. 5 5 5 5 6 6 6-6 35
MIGEISUS, WACHENS CAC 5 o 6 4 5 6 5 6 O 46
nicevillei, Stichophthalma camadeva var. . .. . 27
miccuillal, ZourelA, 6 o 6 6 6 4 o Gu oo 22
nigricans, Taenaris artemis staudingeriforma . . 32
nigricans, Tenaris staudingeriab.. . . . . .. . SI
nigricans, Tevavis staudingeri var. . . .. . . 52
nivescens, Morphotenaris .
nivescens, Taenaris schonbergi.
noureddin, Thaumantis.
noureddin, Thaumantis (Kringana)
noureddin, Thaumantis noureddin
nourmahal, Stichophthalma.
nourmahal, Stichophthalma nourmahal .
nurinissa, Stichophthalma .
nurinissa, Stichophthalma nourmahal
nox, Taenaris urania jairus forma (ab.) .
nox, Tenaris
nysa, Tenaris
oberthiiri, Aemona amathusia
obscura, Xanthotaenia.
obscura, Xanthotaenia busiris (var.) .
occulta, Taenaris horsfieldii (horsfield/)
occultanyiea77 Salieri eee
ochraceofusca, Amathusia
ochraceofusca, Amathusia schénbergi schénbergi
LOTMA se e\ hyn) Se Ae Roa et eesti
ochreofusca, Amathusia (Pseudamathusia) .
Gi, WeEMMEIMBS 5 5: 6/0 4 6 a 2 9 © ©
odana, Thaumantis (MJorpho)
odanawhhaumantisiodaname- nm sn imeeeanne
offaka, Taenaris dimona
onesimus, Taenaris (Tears) dioptrica
onesimus, Tenaris
onesimides, Taenaris dioptrica.
onesimides, Tenaris hyperbolus
onolaus, Taenaris (Tevaris) .
onolaus, Taenaris onolaus
onolaus, Tenaris (Drusilla). . . . .. .
opulenta, Tenaris artemis staudingeri forma
orasis, Amathusia phidippus lombokiana forma .
ottomana, Amathusia
ottomana, Amathusia (Amathuxidia) amythaon var.
ottomana, Amathuxidia amythaon.
ottomana, Amathuxidia dilucida forma
palawana, Amathusia phidippus
palawanus, Amathusia phidippus
pallida, Taenaris bioculata
pallida, Taenaris bzoculatus
pallidior, Clerome arcesilaus var.
pallidior, Faunis arcesilaus .
pamphaga, Taenaris catops .
pamphagus, Drusilla .
pamphagus, Taenaris (Tenaris) catops .
paramita, Thaumantis odana . 64% Oo
atalanawescudamathust cia yae-n ae ne
Pamlina, Mime 5 6 6 6 5 5 6 9 6
patalena, Amathusia phidippus var.
Seite.
. 18,
. 18,
5 lisp
FAM. NYMPHALID®
feali Aemona amathusta var. . .
pealnAcmonay = 4) aos =
pelagia, Taenaris (Tezaris) wahnesi
perakana, Amathusia
perakana, Amathusia perakana .
perakana, Amathusia phidippus
perakana, Amathusia phidippus var.
phaon, Faunis (Clerome, Drusilla)
phaon, Faunis phaon .
phidippe, Moera
phidippus, Amathusia
phidippus, Amathusia (Amathrsta, Morpho, Papilio,
Thoraessa) Shae eee me
phidippus, Amathusia phidippus
phidippus var., Amathusia
philippina, Amathuxidia .
philippina, Amathuxidia amythaon
phorcas, Drusilla .
phorcas, Taenaris (Drusila, Tenaris) .
phoreas, Taenaris phorcas
pishuna, Thaumantis odana odana forma
pishuna, Thaumantis odana.
plateni, Amathuxidia (Amathusta, Zeuxamathusia) .
plateni, Amathuxidia plateni
plateni Clerome . .
plateni, Faunis (Clerome) stomphax .
plateni, Taenaris horsfieldii .
plateni, Tenaris horsfieldii (/orfieldi) (var.)
pletops, Drusilla
Pleonasma, (Clevome.. ee 2 tc,
pleonasma, Faunis menado .
pollicaris, Amathusia .
pollicaris, Amathusia phidippus
polychroma, Xanthotaenia
polychroma, Xanthotaenia busiris.
porthaon, Amathusia (Amathuxidia) amythaon var.
porthaon, Amathuxidia (Amathusia)
portheos, Amathusia
portheus, Amathusta
praxedes, Taenaris ( Tenaris) myops
pyrert, Zeuxaltis
pseudaliris, Thaumantis (Thauria) .
pseudaliris, Thauria aliris
pylaon, Amathusia (Amathuxidia)
pylaon, Amathuxidia amythaon (var.}
rafaela, Taenaris (Tenaris) ansuna ab.
rafaela, Taenaris wahnesi ansuna forma.
ramdeo, Thaumantis .
ramdeo, Thaumantis diores .
ramdeo, Thaumantis diores diores forma
tebeli, Taenaris (Tenarts) honrathi
rebeli, Taenaris honrathi ritsema forma.
iS)
ho
LON
Seite.
yibbei, Amathusia (Pseudamathusia). . . . . . 12
ritsemae, Taenaris (Tevaris)honrathi . . . . 42
rosseli, Taenaris myops (mailua) . . . . . . 50
rothschildi, Taenaris (Tenarts). . . . . 48
Sappho’ Gleomenphaon\wy feiss nee i 34
sappho, Faunis (Clerome) . 34
sappho, Faunissappho .... . 34
saturatior, Taenaris (Teavis) onolaus 43
SOMoynoerden, AcmeMInNNsHe, 5 go 6 o o 5 5 co o oA, Se)
schénbergi, Amathusiaschonbergi_ . 12
schénbergi, Taenaris (Morphotenaris, Tenaris) . 55
schonbergi, Taenaris sch6nbergi. . . . 55
Soyllle, WemerIs (TEAS) cd o = «6 6 44
sekarensis, Taenaris honrathi . 42
sekarensis, Tewartshonrathivar. . .... . 42
selene, Drustlla(Tenaris) . . . . 44, 45, 46, 50
selene, Taenaris (Drusilla, Hyades, Tenaris) . 24145 45)
selene, laenaris selene 44
selene, Tenarts catops var. - 45, 46
selene, Tenaris macrops var. 45
selenides, Taenaris (Tezaris} catops (var.). . . 46
SOME, ZONE, 5 5 « so 5s 5 5 4 23
senaria, Taenaris wahnesi 48
sibulana, Zeuxidia . 23
sidus, Taenaris honrathi ritsemae forma. 42
simonetia, Taenaris staudingeri ab. 32
sorronga, Taenarisdimona. . . 54
SPEMA, Saeed 5 5 6 5 6 Ss 5 5 o 28
sparta, Stichophthalma howqua 28
Sienalnayeerat, REISE 4 6 5 5 4 5 o 5 6 12
staudingeri, Amathusia perakana . 12
staudingeri, Taenaris artemis . . . . o 8 92
Sienuibhaveern, WOHGHS . 6 5 6 66 «6 6 0 6 52
sticheli. Taenaris (Tenaris) 52
sticheli, Taenaris artemis. 52
stomphax, Clerome 34
stomphax, Faunis 34
stomphax, Faunisstomphax. . . . .. . 34
succulenta, Zeuxidia luxerli. . . . 23
suffusa, Stichophthalma howqua (var.) 28
sulana, Clerome 34
sulana, Clerome menado. 34
sulanus) Haunismenado).) = 2). 34
sultanus, Thaumantis noureddin . . .. . . .19, 59
suprema, Amathuxidia (Zewxamathusia) plateni . 15
taenia, Amathusia . . . 10
taenia, Amathusia phidippus forma . . . . . 10
tainia, Taenaris (Tenaris); . . . . 47
tainia, Taenaris tainia. Fi
tainides, Taenaris (Tezaris) wahnesi ab. 7
tainides, Taenaris wahnesi wahnesi forma .
66 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Seite Seite.
tetrica, Taenaris selene forma . 45 verbeeki, Taenaris kirscht forma 5o
timesias, Taenaris (Drusilla). 48 verbeeki, Taenaris myops 50
timesias, Taenaris dioptrica. 48 verbeeki, Taenaris myops mailua forma. 50
timesias, Tenaris artemis ab. . 48 verbeeki, Tenaris 50
timesides, Taenaris artemis . aa 51 victrix, Zeuxidia 21
timesides, Taenaris artemis gisela forma (ab.). Shi victrix, Zeuxidia amethystus (var. ) 21
tineutus, Taenaris artemis 53 virgata, Amathusia . II
tonkiniana, Stichophthalma howqua 28 virgata, Amathuria (Pseudamathusia) . 12
trita, Taenaris dimona dinora forma . 54 virgatus, Amathusia phidippus (var.) . II
_ umbonia, Taenaris phorcas . 44 wahnesi, Taenaris (Tenaris) . 47
umbonia, Taenaris phorcas phorcas forma. 44 wahnesi, Taenaris wahnesi . 47
umbonius, Taenaris phorcas . 44. wallace, Aaweste os
; ; E : wallacei, Zeuxidia amethystus (var.). 21
unipupillata, Taenaris catops westwoodi forma . 45 : % : kite ;
‘ : wattina, Taenaris (Tears) dioptrica. 49
unipupillata, Tenavis westwoodi ab. 45 ESTENGAP ENTE 15
avania, Morpho (Drusilla) . ee westwoodi, Taenaris catops (var.). 45
urania, Taenaris (Drusilla, Papilio, Tenaris). 40 eso. Monavie - 45
urania, Taenaris urania . 40
uranus, Taenaris (Tenarvis) phorcas (var.) 44 zenada, Taenaris (Tenaris) artemis 51
uvanus (Tenaris) . 44 ziada, Taenaris (Tezarts) artemis 51
ERKLARUNG DER TAFELN
TAFEL I
Seite
Fig. 1. Schema des Fliigelgeadders der Gattung Amathusia (A. phidippus Linné, Q 1/1). . . . . 7
= 2 == — — Amathuxidia (A. amythaon Doubl., Gi t/t). . . . 13
= 85 _ — — Thaumants) Gaodana Gods (O r/1) ea) eo
— 4 — _ — APEMND (Be HEAD Vallone, (GOO) 5 co 6 o 6 2 6)
= 9 — — _— anlraniae (Ie, CLES NN CBBGFe5 CP UBT) oo eo 0 oe | BA
— 6. — — — Stichophthalma (S. camadeva Westw., GI/I) . . . 26
TaFEL 2
Fig. 1. Amathusia virgata Butler & . PE Moree toh ea ee a PEM PRaRP AERTS fda ati aso oh
— 2. Amathuxidia plateni platent Geudinee: i eet Bate ieeray | rg Ito)
— 7. Schema des Fliigelgeiders der Gattung A:mona a Vamabiisis Hea ot 4/3) ea IO RS 2)
— &. — — — Faunis (F. aevope excelsus Fruhst.. Q 1/1) . . . . 3%
= 0. — — — UGS (le Creag Means, CGD) 5. 6 co 2 5 « OF
— 10. — — — Xanthotaenia (X. busivis Westw., Gi 7/4). . . - . S56
FAM. NYMPHALID
3. Amathuxidia plateni platent Staudinger Q
4. Thaumantis noureddin sultanus Stichel Q .
5.
6. — luxerit luxerti Hiibner Q
7. Stichophthalma lowsa mathilda Janet o& .
8. = neumogent Leech QO
g. Aemona amathusia oberthiivi Stichel Q .
to. — Jena Atkinson Q
-11. Faunts menado menado Hewitson Q
—1I2. — _ aerope excelsus Fruhstorfer Q .
13. Taenaris diana diana Butler © .
14. — phorcas uranus Staudinger Q
-15. Taenaris selene Westwood 3
16. — wahnest senaria Stichel
ge — cyclops, forma agasta Stichel o
18. — artemis myopina Fruhstorfer of.
Hagen in Westfalen, 4. December 1905.
TaFEL 3
Zeuxidia nicevillei Fruhstorfer Gt (Reproduction ins adneig anfieiliendlom Lichte)
TAFEL 4.
Fare. 5
TaFEL 6
67
15
19
22
22
28
28
30
31
33
36
41
44
44
48
49
51
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Faunis menado menado Hew: 9 Faunis aerope excelsus Frahst. 9
Taenaris phorceas wranus Stgr 9 Taenaris diana diana Butl.9
FAM. NYMPHALIDS&.
SUBFAM. AMATHUSIINE.
5
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Taenaris selene Westw- 3 Taenaris wahnesi senaria Stich. 3
Tanaris eyclops,forma agasta Stich.
Taenaris artemis myopina Fruhst. 3
FAM. NYMPHALIDE.
SUBFAM. AMATHUSIIN&A.
6
pe | :
=r,
voy 37m FASCICULE LEPIDOTERA
Q
GENERA |
INSECTORUM
DIRIGES PAR
P. WYTSMAN
LEPIDOPTERA -
RHOPALOCERA
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On souscrit chez M. P. Wytsman, Zoologiste, 43, rue Saint-Alphonse, a Bruxelles
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=, e = :
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LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
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MIT 6 COLORIERTEN TAFELN
© ix die Subfamilie Heliconiinae ist als Typus die Gattung Heliconius [Linné, 1758,
Subgenus(1)| anzunehmen. Dieselbe gehdrt zu der Reihe von Genera, welche Latreille
(1805) als erste Familie Papzlionides der Tagfalter, Diuyni, in seiner « Histoire naturelle
1. des Crustacés et Insectes » vereinigte und spiter (182g) in etwas engerer Begrenzung als
ako Hexapoda der Tribus 1 Pafilionides bezeichnete. Th. Horsfield (1828) stellte diese Gattung als
« aberrantes Genus ») im Verein mit genetisch mehr oder weniger entfernt verwandten in die 3. Stirps
seines Systems mit Chilopodiform oder Scopolendriform larvae. Bereits 1827 hatte indessen Swainson aus
dem System von Latreille die Familie Heliconidae als Sonder-Einheit eliminiert, aber ohne nihere
Begrenzung des Begriffs, und Boisduval & Leconte (1833, 1836) nehmen die Bezeichnung Helicontdes,
Blanchard (1840) die Wortbildung Heliconites als Familie oder Tribus an, indessen umfassten diese
Einheiten ausser Heliconius s. str. eine Reihe Genera mit ahnlichen Arten, so auch Acraeinae. In den
folgenden Veréffentlichungen von Doubleday (1844, 1847), Wallace (1853) u. a. ersehen wir ebenfalls
eine ahnliche Begrenzung der Familie, die nunmehr wieder als Heliconidae bezeichnet wird. Sie enthielt
neben Heliconius s. str. insbesondere Danainae, Ithomtinae (Neotropiden nach Schatz), dagegen wurden
Acraeinae und das Genus Eueides ausgeschlossen. Eine genauere und treffendere Scheidung der Begritfe
erfolete dann 1862 durch Bates. Dieser teilte die Familie unter Ausschluss der Acvaeznac s. str. in die
beiden Gruppen Danaoid-Heliconidae und Acyvaeoid-Heliconidae; \etztere umfasste die beiden Gattungen
1) Wir betrachten hier, in Uebereinstimmung mit C. D, Sherborn (Index Animalium, Vol. 1, p. 452, Cambridge, 1902) u. a., die von Linné in
seinem Systema Naturae, ed. 10 u. 12, neben den Gattungsnamen Papilio etc. benutzten Bezeichnungen, die in den Seiteniiberschriften als Worte im
Singular stehen, als systematische Einheiten in subgenerischem Sinne.
2 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Heliconius und Eueides und wurde schliesslich von genanntem Autor als Subfamilie Heliconinae der Familie
Nymphalidae bezeichnet. In dieser Begrenzung hat sich die Familie bzw. Unterfamilie bis heutigen
Tages im allgemeinen erhalten, wengleich, namentlich infolge unsicherer Scheidung der Gattungen,
absichtslos oder auch mit Absicht nicht selten noch Vertreter der [thomunae (Neotropiden) zu den Helico-
niinae gerechnet worden sind. In der Wahl der Wortbildung und auch beziiglich der Anwendung der
systematischen Bezeichnung fehlte es an einem einheitlichen Prinzip bis auf die neueste Zeit und sind
die verschiedenen Auffassungen und Ausdriicke aus dem nachstehenden Literaturnachweis ersichtlich.
Die Anregung F. Millers (1877), in die Familie der Heliconiiden die Gattungen Dione, Colaenis und
ahnliche vermége naher nattirlicher Verwandtschafts-Charaktere einzuschliessen, fand nur vereinzelt
Aufnahme durch Haase (1891) und Reuter (1896). Autor vorliegenden Fascikels behandelte den systema-
tischen Begriff im gleichen Umfange bereits als eigene Familie (1905), die vorgeschriebene Disposition
des Werkes bedingt indessen die Anwendung der Bezeichnung als Subfamilie ohne Begriffsinderung.
LITERATURNACHWEIS
Heliconidae. Swainson in Philos. Magaz. ser. 2, Vol. 1, p. 187 (1827).
Heliconides. Boisduval u. Leconte, Lép. Amér. a Vol. 1, p. 138 (1833).
Heliconides. Boisduval, Spec. Gén, Lép. Vol. . 165 (1836).
Heliconites. Blanchard in Hist. Nat. Ins. Vol. 3 Do ae part.) (7840).
Heliconidae (part.) + Acraeidae (part.). Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep. Vol. 1, p. 52;
p. 60 (1844).
Heliconidae. Doubleday in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 96 (1847).
Heliconidae, Tribus (part.) + Argynitae, Divisio (part.). Chenu u. Lucas in Encycl. Papill. Vol. 1
p. 66 u. 80 (1853).
Heliconidae. Wallace in Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol 2, p. 258 (1853) (part.).
Heliconidae (part.) + Nymphalidae (part.). Ménétriés, Cat. Acad. Imp. St.-Pétersb. Lep. Vol. 1
Do WIS jos Dit (GKSISI)))o
Acraeoid-Heliconidae, Gruppe. Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 496 (1862).
Heliconinae, Subfam. Bates, ibidem, Vol. 23, p. 515, 553 (1862).
Heliconiidae. C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 79 (1862).
Heliconina. Herrich-Schiffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 18, p. 96, t. 75 (1864).
Heliconinae, Subfam. Bates in Journ. Ent. Vol. 2, p. 176 (1864).
Heliconinae, Subfam. Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 119 (part.) (1869).
Heliconiinae, Subfam. Butler in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 489 (part.) (1870).
Heliconides (pait.) + Acréides (part.). Boisduval, Lép. Guatém. p. 28 (1870).
Heliconinae, Subfam. Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 138 (1871).
Heliconides, Tribus. Capronnier in Ann. Soc. Ent. Belg. Vol. 17, p. 23 (part.) (1874).
Heliconinae, Subfam. Butler u. Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. 1874, p. 350 (1874).
Heliconidae. Scudder in Bull. Buffalo Soc. Vol. 2, p. 245 (part.) (1875).
Heliconidae. F. Miiller in Ent. Zeit. Stett. Vol. 38, p. 492 (part.) (1877).
Heliconinae, Subfam. Godman u. Salvin in Proc. Zool. Soc. Lond. 1877, p. 62.
Heliconinae, Subfam. Bates in Ann. Nat. Hist. (4), Vol. 20, p. r19 (1877).
Heliconinae, Subfam. Butler in Trans. Ent. Soc. Lond. 1877, p. 312.
Heliconides, Tribus. Bar in Ann. Soc. Ent. Fr. (5), Vol. 8, p. 23 (1878).
Heliconinae, Subfam. Godman u. Salwin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 143 (1881).
Heliconina. Snellen in Tijdschr. v. Ent. Vol. 30, p. 13 (part.) (1886).
Heliconinae. W. Miiller in Zool. Jahrb. Vol. 1, p. 428 (1886).
FAM. NYMPHALIDA:
Heliconiden, Fam. Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 74 (1886) ;
Heliconinae, Subfam. Haase in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 4, p. 32 (1
Heliconiden. Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 28r (1893).
Heliconiinae, Subfam. Kirby, Handb. Lep. Vol. 1, p. 40 (1894).
Heliconidi. Chapman in Ent. Record, Vol. 6, p. 152 (1895).
Heliconiden, Fam. Reuter in Acta Soc. Sc. Fenn. Vol. 22, p. 48 (1896).
Heliconiinae, Subfam. Reuter. ibidem, Vol. 22, p. 554 (1896).
Heliconiinae, Subfam. Reuter in Ent. Record, Vol. 10, p. 96 (1898).
Heliconiinae, Subfam. Jordan in Novit. Zool. Vol. 5, p. 387 (1898).
Heliconiinae, Subfam. Kirby in yee u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 10 (1901);
Heliconidae. Dyar in Bull. U. S. Nat. Mus. Vol. 52, p. 32 (1902).
Heliconinae. Kaye in Trans. Ent, Soc. Lond. p. 167 (1904). '
Heliconiidae, Fam. Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 1 (1905).
Allgemeine Charaktere. — Die Heliconiinae sind Tagfalter mittlerer Grésse von schlankem,
langlichem Fliigelschnitt ohne wesentliche Ecken- oder Winkelbildung. Die Farbung ind Zeichnung
der Fliigel ist meist lebhaft bunt und mannigfaltig aber auch sehr variabel und THpecuingie: Der
Zeichnungscharakter spaltet sich nach zwei Hauptrichtungen, in solchen mit schwarzen Zeichnungen
auf gelblich-, rétlich- oder dunkelbraunem Grunde und solchen mit farbigen Zeichnungen auf schwarzem
oder schwarzblauem Grunde, nach bestimmten Prinzipien, die bei den einzelnen Gattungen niaher
erliutert werden.
Kopf ziemlich breit, Kérper schlank, Abdomen linger, selten etwas kiirzer als der Hinterfliigel.
Die Augen sind gross, eiférmig gewélbt, nackt; die Palpen deutlich dreigliedrig, den Kopf nur wenig
iiberragend, dicht beschuppt und verschiedenartig behaart. Der an der Innenseite des Basalgliedes
befindliche Basalfleck in verschiedener Grésse, die Struktur auf demselben bei den beiden zugehérigen
Gattungen ebenfalls etwas verschieden. Die Antennen sind schlank, nur schwach spindelférmig oder
kolbenf6rmig verdickt, von verschiedener Linge, dorsal mehr oder weniger beschuppt, ventral mit drei
bis zum Endglied gut ausgebildeten Lingsgraden, zwischen denen zwei ziemlich tiefe Furchen liegen.
Vorderbeine bei beiden Geschlechtern verkiimmert, beim co mit eingliedrigem, glattem, beim Q mit
fiinfgliedrigem, bedorntem Tarsus. Das Geiider ist zart aber nicht gerade schwach, Zelle in Vorder- und
Hinterfliigel geschlossen, Praecostalis des letzteren einfach, wurzelwiirts gekriimmt. Subcostalis des’
Vorderfliigels fiinfastig, Mediana nahe der Fliigelbasis hinten mit kurzem, schrig distalwiarts. gerich-
tetem, spitzem Aderansatz (Mediansporn), welcher als Rudiment einer riickgebildeten Ader gedacht
werden muss, deren weitere Lege in Gestalt einer leichten Membranfalte (Faltenader) zwischen HM
und SM = sake ist.
es ist bei der Carine Heliconius becbucheae worden und didee Beobachiniigd
(Bates, Schatz, Michael u. a.).
a ihn: : Nese ceog sind nur bei be Formen ey grcreey } ;
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
rmig, etwa um die Halfte héher als breit, vertikal und horizontal gerieft, so dass die Oberfliche mit
zahlreichen unregelmassig pentagonalen oder rhomboidalen Vertiefungen bedeckt ist. Angeheftet ist
dasselbe mit der flachen Breitseite an der Spitze junger Ranken und Zweige oder auf der Unterseite der
Blatter der Futterpflanze. Die Raupen leben, wahrscheinlich gesellig, an Passiflora-Arten (P. alata Ait.,
P. edulis Sims., P. amethystina Mek.. P. coerulea L.u.a.), sie sind walzenférmig, unscheinbar weisslich
oder gelb gefarbt, erwachsen mit quer- oder langsstehenden Reihen von schwarzen Punkten oder
Flecken. oder in der dorsalen Halfte braun bis schwarz, seitlich und unten blassgelb, in dem Dorsal-
streifen gelbe P uit dem Alter an Grésse zunehmen (Eweides). Der Kopf schwarz oder gelb
? fen, mit Borsten besetzten Hérnern, auf dem Kérper zahlreiche Warzen mit
n und eut entwickelte, verzweigte Dornen von schwarzer Farbe, an deren Stelle in der
“nur - primare, spitze oder geknépfte Borsten vorhanden sind. Die Puppe besitzt drei seitlich
bewegliche Segmentverbindungen, ist hangend, schlank, Fliigelscheiden weit vorgezogen (Heliconius)
oder nur wenig vortredend (Eueides), dorsal der Kérper mehr oder weniger sattelartig eingedriickt,
Oberflache dornig und héckerig. namentlich auf dem Riicken, am unteren (Kopf-)Ende zwei wellig
gerandete oder glatte, stark divergierende H6érner. Gewisse Puppen der Gattung Eueides haben auf —
dem 6. und 7. Segment dorsal zwei ausserordentlich lange, zweigartige Fortsitze, sie hangen zuerst
vertical und biegen sich dann derart. dass der Kérper — mit der ventralen Seite nach oben — horizontal,
beziehungsweise parallel zum Anheftungs-Koérper gerichtet ist. Farbung meist unscheinbar weisslich
oder gelb. schwarzbraun gemischt und mit undeutlichen Langsstreifen, die Dornen schwarz oder gelb,
bei der Gattung Heliconius der Korper unterhalb der Fligelscheiden mit silberglanzenden Flecken pack
fede W. Miller, W. H. ES .
UEBERSICHT DER GATTUNGEN
I. — Antennen fiber halber Linge des Vordervandes des Vorderfliigels, distal nur
-— schwach heulenformig verdickt, dorsal der Schaft nur in der proximalen
Halfte dicht beschuppt . . . . . ... . 1. Genus Heticontus, Linné.
— Antennen unter halber Lange des Vorderrandes des Ca Be fiipels. distal mit i
deutlich abgesetztem Kolben, dorsal bis zum letzten Gliede dicht beschuppt. 2. Genus Evet1pes, Hiibner.
. GENUS HELICONIUS, LINNE ~
Heliconius (Subgenus). Linné, Syst. Nat. (10), p. 465 (part.) (1758) ; H. (Genus). Latreille, Hist. Nat.
Crust. Ins. Vol. 14, p. 200 (1805); derselbe, Gen. Crust. Ins. Vol. 4, p. 200 (part.) (1804); Oken,
Lehrb. Naturg. Vol. 3 (1), p. 725 (part.) (1815); Latreille in Cuvier, Régne anim. Vol. 3, p. 549
(part.) (1817); derselb., Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 10 (1819); Bates in Trans. Linn. Soc.
Lond. Vol. 23, p. 553 (1862); C. u. R. Felder in Wien: Ent. Mon. Vol. 6, p. 79 (1862); Kirby,
Cat. diurn. Lep. p. 138 (part.) (1871); Scudder in Proc. Amer. Acad. Vol. 10, p. 185 (1875);
derselbe, in Bull. Buffalo Soc. Vol. 2, p. 235 (1875); F. Miiller in Ent. Zeit. Stett. Vol. 38.
P- 492 (1877); Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 143 (1881); Staudinger
(u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 74 (1885) (part.); Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett.
Vol. 2, p. 105 (1887); Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 281 (1893); Kirby
in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett. Neue Ausg. p. 10 (1900); Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45,
3 u. Gatt. Heliconius. Vol. 1, p. 1 (1900); derselbe in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 25 u. Gatt.
conius, Vol. 2, p. 1; Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 2.
‘Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 202 (part.) (181g); Boisduval u. Leconte,
Lép. Amér. er: Vol. 1, p. 138 (part.) (1833); Duncan, Foreign Butt. p. 133 (1837); Doubleday,
ae
FAM. NYMPHALIDA
List Ins. Brit. Mus. Lep. Vol. 1, p. 53 (part.) (1844); Doubleday (Westy
diurn. Lep. Vol. 1, p. ror (part.) (1847); Chenu u. Lucas in Encycl. P
(1853); Ménétriés, Cat. Acad. Imp. St.-Pétersb. Lép. Vol. 1, p. 18 (18 :
Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 16, p. 28, 146 (1862), Vol. 18, p. 97, 179 (18 al, Lép.
Guatém. p. 28 (1870) an
Heliconie. Latreille, Fam. nat. Régne anim. p. 32, 468 (1829); Gray in Griffith, An
p- 586 (1832).
Heliconias. v. B6nninghausen in Verh. Nat. Ver. Hamb. Vol. g, p. 32 (1896). =
Nereis. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 11 (spec. : N. festiva vesta) (1806-16).
Mechanitis. Fabricius, Syst. Gloss. M. S.. Illiger in Mag. Ins. Vol. 6, p. 284 (part.) (spec. : M. doris,
M. phyllis) (1807); Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 1 (spec. : M. eucrate = H. narcaea) (als
Mechanttes) (1822-26). '
_ Eueides. Hiibner, Verz. Schmett. p. 11 (part.) (spec. : E. encoma, E. pione — H. numata Cram.) (1816).
Melinaea. Hiibner, ibidem, p. 11 (part.) (spec. : M. clara = silvana Cram.) (1816).
Migonitis. Hiibner, ibidem, p. 11 (part.) (spec. : M. aoede, M. evato = vesta Cram.. M. burneyi u. a.);
Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 218 (spec. typ. : M. erato) (1875).
Sunias. Hiibner, Verz. Schmett. p. 12 (spec. : S. phyllis, S. lucia, S. melpomene, S. callicopis) (1816);
Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 271 (spec. typ. : S. melpomene) (1875).
Apostraphia. Hiibner, Verz. Schmett. p. 13 (part.) (spec. : A. charitonia fiir charithonia) (1816); Scudder
in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 116 (spec. typ. : A. charithonia),(1875); Dyar in Bull. Unit.
Stat. Mus. Vol. 52, p. 32 (spec. ead.) (1902).
Sicyonia (Sycionia err. typ.). Hiibner, Verz. Schmett. p. 13; Index p. 7 (spec. : S. sara = clytia Cram..,
S. thamar u. a.) ee Scudder in Proc. Amer. Acad. Vol. 10, p. 268 (spec. Bale ef ea aaete
thamar Hbn. (1875 Ja a ye
Ajantis. Hiibner, Verz. aie. p- 13 (spec. : A. sappho fiir sapho, A. antiocha fiir eee. A. hecale)
(1816); Scudder in Proc. Amer. Acad. Vol. 10, p. 106 (spec. typ. A. sappho fiir sapho) (1875).
Laparus. Billberg, Enum, Ins. p. 77 (part.) (spec. L. sara = rhea L.. doris u. a. ) (1820).
Phliogris. Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 5 (spec. : P. melpomene) (1822-26).
Blanchardia. Buchecker, Syst. Ent. t. 56 (126) (spec. : B. chaorina) (1880?).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, Augen eiférmig gewélbt, nackt, Stirn kurz behaart.
Palpen flach, Querschnitt eirund, dicht beschuppt, sparlicher behaart, an der Innenseite schwacher,
ventral starker und etwas abstehend behaart und einzelne Haare langer und fein borstenartig hervor-
tredend. Basalglied kurz, stark gekriimmt, Basalfleck gelblich chitinisiert, klein, nur die etwas vortre-
trende dorso-proximale Ecke des Gliedes einnehmend, distal durch ziemlich reichlich anliegende
Schuppen quer abgegrenzt, fast in ganzer Ausdehnung auf einer bauchigen Wolbr ing mit geraden,
etwas nach oben und vorn geneigten spitzen kegelférmigen Gebilden besetzt. welche an der dorsalen
Seite des Fleckes etwas an Grésse zunehmen. Mittelglied etwa von doppelter ‘Lange des Basalgliedes,
schwach S-férmig aufwarts gebogen, der Stirn bis auf das distale Ende dicht anliegend und dort dorsal
mit einem schopfartig abstehenden Haarbiischel bekleidet. Endglied kurz, langlich eiférmig, zugespit;
etwas nach vorn gerichtet. Antennen diinn, gerade gestreckt, wenig kiirzer oder etwas langer
Zelle des Vorderfliigels, ohne deutlich abgesetzten Kolben, sondern distal nur ganz sch
allmahlich keulenartig verdickt, an der Spitze wiederum eine Wenigkeit verjingt, der Schaft ventral
nackt, dorsal in der proximalen Halfte dicht mit schmalen Schuppen besetzt, die allmahlich sparlicher
werden und sich distal ganz verlieren, oder in der distalen Halfte iiberha fehlen. An der ventralen
Seite sind drei ziemlich hohe und bis zur Spitze gut ausgebildete Langsgr de vorhanden, welche zwei.
furchenartige Vertiefungen abschliessen und trennen. In diesen Furchen stehen kleine feine Harchen =
ziemlich gleichmassig verteilt und einzelne, paarweise, borstenartige Haare an den einzelnen Seg
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Thorax und Abdomen schlank, kurz und glatt behaart und beschuppt, letzteres meist iiber den Hinter-
fliigel hinausragend, selten kiirzer, beim Q zuweilen am Ende keulenartig verdickt. Vorderbein des ¢&*
glatt und dicht beschuppt, sparlicher behaart, mit langlichem, eingliedrigem, an der Spitze verjiingtem
Tarsus, der ungefihr von halber Lange der Tibia ist; letztere etwa so lang wie das Femur. Vorderbein
des 9 mit finfgliedrigem Tarsus, jedes Glied desselben mit einem Paar kurzer Dornen, das letzte mit
einem kurzen, spitzen, klauenartigen Fortsatz; das erste Glied langer als die vier anderen zusammen;
Femur etwas langer als ‘Tibia, letztere doppelt so lang als der Tarsus; alle Glieder dicht beschuppt,
sparlich behaart,. die Behaarung lateral leicht gescheitelt. — Vorderfliigel langlich, gestreckt oder stumpf-
tumpfe Ecke am Hinterwinkel gedacht. Vorderrand schwach gekriimmt, Apex
etwas eckig. Distalrand leicht konvex, seltener konkav hinter einer vorspringenden
nterwinkel abgerundet stumpfwinklig, Hinterrand leicht geschweift, bedeutend kiirzer als der
orderrand. Costalis und Subcostalis in ganzer Linge getrennt, erstere am letzten Drittel in den Vorder-
rand auslaufend. Subcostalis fiinfastig. SC 1 entspringt in einiger Entfernung proximal von der vorderen
Zellecke, S C2 kurz distal von ihr oder unmittelbar an derselben, beide laufen in gleich schriger
Richtung in den Vorderrand, SC 4 und 5 bilden eine missig lange Gabel und miinden beide in den
Distalrand. Etwa in der Mitte zwischen SC 2 und SC 4 zweigt SC 3 ab und lauft in den Apex. Die
Lage von S ‘C 2 ist unbestindig und selbst bei ein und derselben Art etwas schwankend. Zelle lang und
schmal, in der Mittellinie gemessen etwas kiirzer als der halbe Fliigel, die vordere Ecke spitz und weit
vortretend. V DC sehr kurz riicklaufend oder ganz verkiimmert. M DC und H DC etwa von gleicher
Lange, sie bilden einen gegen die Fliigelbasis konkav gekriimmten Bogen oder in die Zelle einspringenden
_ Winkel, zuweilen mit ein oder zwei kleinen riicklaufenden Aderansatzen. H DC trifft die Mediana in
x -spitzem Winkel. V R und H R in ziemlich gleichmassiger und flacher Kriimmung verlaufend. Letztere
entspringt entweder im Scheitel des von den Discocellulares gebildeten Winkels oder Bogens oder etwas
weiter nach vorn, so dass M DC etwas verkiirzt wird und H DC winklig gebrochen ist (Fig. 1).
Mediana nahe der Basis hinten mit einem distalwdrts gerichteten
spornartigen Ansatz, dem Rudiment einer Ader, die sich in der
3
4 ; oy. ‘
5 Fortsetzung als schwache Falte in der Membran bis zum Distal-
rand verfolgen lasst. SM dem Hinterrande folgend, schwach
S-férmig gebogen. Hinterfliigel etwa eirund, mit abgeflachtem
Vorderrande oder abgestumpft dreieckig mit konvex gekriimmten
Seiten. Apex meist leicht geeckt, Distalrand gewellt, Hinterwinkel
abgerundet, seltener etwas gewinkelt. Beim Q der Vorderrand
flacher gekriimmt als beim 6‘, und demzufolge bei ersterem die
iS Siete! . Heliconius numatus isabellinus Bates.
Heliconius numata var. tsabellinus, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. aie
Heliconius aurora var. isabellinus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 75 (1885).
Ss | Heliconius numata isabellinus, Riffarth i in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 36; Gatt. Helicon. Vol 2, p. 12 (1901).
Nord-Brasilien : Obidos, Amazonas; Peru : Iquitos, Yurimaguas.
c. Heliconius numatus praelautus Stichel, nov. subsp. (1). — Taf. 1, Fig. 2, 2.
Peru : Ucayali.
(1) A. numatus praelantus. — Subspecies supra fulva. Alis anticis striga lata cellulari, altera prope marginem posteriorem, fascia irregulari
transversali discali obliqua, apice nigris; alis posticis fascia media margineque distali dentatis, nigris. — Diese neue Unterart schliest -sich an
So. EL. 92. tsabellinus an und ist von ibm im wesentlichen dadurch unterschieden, das die jenseits der schwarzen Discalfiecke liegende Schragbinde bis zu den
en yerbreitert und mit diesen vollstandig in gleichmassig braunem Farbton verschmolzen ist, nur die Adern bleiben fein schwarz bestaubt.
iwarzen Apex stehen einige verloschene braune Fleckchen. Endzellfleck gross, fast quadratisch, Medianflecke und Randfleck zusammengeflossen.
entwickelt, mit breitem, unmittelbar anhangendem Ausliiufer nach der Fligelwurzel. — Hinterfligel mit deutlich isolierter schwarzer
durch das hintere Zellende lduft und hinten stark gekerbt ist; samtliche sie schneidenden Adern fein braun bestéubt. Randbinde
urz, vorn ebenfalls stark ausgezackt, gegen Apex und Hinterwinkel wesentlich verschmilert und ohne Saumflecke. — Unterseite wie
binde des Hinterfligels in langliche Flecke aufgelést, in der Randbinde verloschene braunliche Saumfleckchen. — Vorderfligel-
i coll. Riffarth, Berlin. — Peru (Ucayali}.
FAM. NYMPHALIDZ: II
a. Heliconius numatus mavors \Veymer.
Heliconius superioris var. mavors, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. | Iris), Vol. 6, p. 305 (1893).
Heliconius numata mavors, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 305; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 12 (1901).
Nord-Brasilien : Obidos; Niederlandisch-Guayana.
e. Heliconius numatus superioris Butler. — Pag, 7, Fig. 2.
Heliconius superioris, Butler in Ann. Nat. Hist. (4), Vol. 15, p. 224 (1875).
Heliconius superioris, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris) Vol. 6, p. 305 (1893).
Heliconius numata superioris, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 35; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 11 (1901).
Heliconius numata var. maecenas, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris) Vol. 6, p. 304 (1893).
Nord-Brasilien : Para, Villa-Bella, Teffé (Ega), Santarem, Itaituba, Obidos.
%. Forma geminata Weymer. — Pag. 7, Fig. 3.
Heliconius geminatus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. Iris), Vol. 6, p. 299, t. 4 f. 3 (1893).
Heliconius numaia geminatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 37; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 13 (1901).
Heliconius supertoris, Riffarth, ibidem, Vol. 45, p. 214; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 32 (1900).
Para, Teffé, Obidos. ’
7. Heliconius numatus gordius \Veymer.
Heliconius gordius, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 312, t. 4 f. 9 (1893).
Heliconius numaia gordius, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 35; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 11 (1gor).
Oberer Amazonas : Sao Paulo de Olivenca.
¢. Heliconius numatus nubifer Butler.
Heliconius nubifer, Butler in Ann. Nat. Hist. (4). Vol. 15, p. 224 (1875).
Heliconius numata nubifer, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 36; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 12 (1901).
Oberer Amazonas : Fonteboa.
5. Heliconius silvana Cramer.
Heliconius silvana, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 50 (1905).
a. Heliconius silvana silvana Cramer.
Papilio stlvuana, Cramer, Pap. Exot. Vol. 4, p. 143, t. 364 £. C, D (1781).
Heliconia siluana, Doubleday in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 104 (1847).
Heliconia syluana, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 215 (1819).
Heliconius sylvana, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 74. (1885).
Heliconius silvana, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 38; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 14 (1901).
Heliconius silvana silvana, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 51, f. 10 (1905).
Melinaea clara, Hubner, Verz. Schmett. p. 11 (1816).
Nord-Brasilien : Para, Obidos, Santarem, Massauary, Manicore. Peru : Iquitos, Pebas, Yurimaguas.
Guayana. Venezuela.
%. Forma diffusa Butler. — Taf. |, Fig. 3, o.
Heliconius diffusus, Butler in Cist. Ent. Vol. 1, p. 168 (1873).
Heliconius diffusus, WWeymer in Deutsche Ent. Zeit. Vol. 6, p. 296 (1893).
Heliconius silvana diffusus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 39; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 15 (1901).
Para.
+6. Heliconius silvana robigus Weymer.
Heliconius robigus, Weymer in Ent. Zeit. Stettin, Vol. 36, p. 382, t. 2 f. 5 (1875).
Heliconias vobigus, Bonninghausen in Verh. Nat. Ver. Hamburg, Vol. 9, p. 32 (1896).
Heliconius silvana robigus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 39; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 15 (1901).
Brasilien : Espirito-Santo, Rio de Janeiro, Minas Geraes.
¢. Heliconius silvana metaphorus Weymer.
Heliconius metaphorus, Weymer in Ent. Zeit. Stettin, Vol. 45, p. 24, t. 2 f. 1 (1884).
Heliconius stlvana metaphorus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 39; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 15 (1901).
Heliconius ocanna, Buchecker, Syst. Ent. Lep. t. 52 f. 2 (1880).
Heliconius sylwana var. antioquensis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 74 (1885).
Heliconius ocania, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 13 (1900).
Heliconius catilina, Plotz M.S., Icon. t. 496.
Colombia : Cauca, Antioquia. Ecuador: Palmar, Balzapamba.
d. Heliconius silvana ethra Hiibner.
Eucides ethra, Hiibner, Zutr. exot. Schmett. Vol. 3, p. 35, f. 553, 554 (1825).
12, LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Heliconia ethra, Doubleday in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn, Lep. Vol. 1, p. 104 (1847).
Heliconius silvana ethra, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 40; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 16 (1001).
Fleliconius dryalus, Hopffer in Ent. Zeit. Stettin, Vol. 30, p. 452 (1869).
Feliconius dryalus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Vol. 6, p. 296 (1893).
Heliconius dryalus, Buchecker, Syst. Ent. Lep. t. 53 f. 7 (1880).
Heliconius zuleika, Buchecker, ibidem, t. 54 f. 10, 11 (1880),
Brasilien : Bahia.
e. Heliconius silvana mirificus Stichel, nov. subsp.(1). — Taf. |, Fig. 3a, ©.
Peru : Ucayali.
6. Heliconius ethilla Godart.
Heliconius ethilla, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 54 (1905).
a. Heliconius ethilla ethilla Godart.
Heliconia ethilla, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 219 (1819).
Heliconius ethilla ? Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 194 (1900).
Heliconius ethilla, Kaye in Trans. Ent. Soc. Lond, p. 167 (1904).
Heliconius metalilis var. flavidus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 302 (1893).
Heliconius eucoma flavidus, Riffarth in Berl, Ent. Zeit. Vol. 46, p. 45; Gattg. Helicon. Vol. 2, p. 21 (1901).
Trinidad, Venezuela. — ? Antillen (Godart).
b. Heliconius ethilla eucomus Hiibner.
Eueides eucoma, Hiibner, Verz. Schmett. p. 11 (nom. nud.) (1816).
Eueides eucoma, Hiibner, Zutr. Exot. Schmett. Vol 3, p. 38, 289, f. 577, 578 (1825).
Heliconia eucoma, Doubleday in Doubleday, Westwood u. Hewitson Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 104 (1847).
Helicontus eucoma, Méschler in Verh. Zool.-Bot. Ges. Wien. Vol. 32, p. 315 (1883).
Heliconius ewcoma, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 41; Gattg. Helicon. Vol. 2, p. 17 (1901).
Heliconius ethilla eucomus, Stichel u. Riffarth in Tierreich. Vol. 22, p. 55, f. 11 (1905).
Brasilien : Para, Itaituba.
%. Forma flavofasciata Weymer.
Helicontus eucoma var. flavofasciatus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris) Vol. 6, p. 303 (1893).
Heliconius eucoma flavofasciatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 42; Gattg. Helicon. Vol. 2, p. 18 (1901).
Para.
c. Heliconius ethilla tyndarus Weymer.
Heliconius tyndarus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 317 (1896).
Heliconius encoma tyndarus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 42; Gattg. Helicon. Vol. 2. p. 18 (1901).
Bolivien : Corvico.
d,. Heliconius ethilla numismaticus \Weymer.
Aleliconius eucoma var, numismaticus, Weymer (Staudinger MS.) in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 303,
t. 4, £. 4 (2) (1893).
Heliconius eucoma numismaticus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 42; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 18 (1901).
Brasilien : Santarem, Itaituba. ‘
(1) A. silvana mirificus. — Alis anticis ad basin fulvis, medio pallidioribus, pazte distali et apicali lata, macula oblonga cellulari, altera
distali, striga indistincta anali nigris; macularum hyalinarum seriebus tribus transversis, quarum proxima obsoleta; posticis fulvis, serie macularum
postdiscalium, margine distali, apice, striga subcostali nigris, macula albido-fulva apicali; subtus lineolis marginalibus albis.
Vorderfliigel etwa wie bei //. stlvana silvana, jedoch die dort gelben Flecke gebleicht, fast glasartig und teilweise schwirzlich iberstaubt,
namentlich die proximal gelegenen. Der Charakter einer medianen Bindenzeichnung ist aus diesem Grunde fast ganz verschwunden. Nahe dem Rande
im Apex drei deutliche weisse Fleckchen. Der schwarze Keilfleck in der Zelle linglich rund, gross, ohne Spitzenausliufer. Vorderrandstreif, Endzell-
und vorderer Medianfleck unter sich, sowie der hintere, gut ausgebildete Medianfleck mit dem Randfleck verflossen. Submedianstreif nur distal schatten-
haft erhalten, Hinterwinkel nur schmal schwarz gesiumt, braun ausgefiillt, etwas schwarzlich iiberstiubt. — Hinterfliigei mit missig breiter, vorn gezackter
und etwas zerstaubter Randbinde, in der die auf der Unterseite sehr intensiv aufgetragenen marginalen Strichflecke leicht durchscheinen. Mittelbinde
auffillig von der Zeichnung der typischen Unterart abweichend, aus einzelnen, dreieckigen und linglichen, vollstindig isolierten Flecken bestehend; im
Apex ein weisslicher, schwarz eingerahmter und hinter diesem ein anderer, weniger deutlicher heller Fleck; vor der Subcostalis distal das Rudiment
eines schwiarzlichen Lingsstreifes. — Unterseite bleicher, die durch die discalen Flecke gespaltene und eingeschrinkte gelbliche Medianbinde des Vorder-
fliigels besser hervortretend aber bei weitem nicht so intensiv gelb wie bei der typischen Unterart; die weissen Apicalflecke reiner in der Farbe, auf
5 vermehrt; Keilfleck mit abgetrenntem Bruchstiick eines Ausliufers nach der Wurzel. Hinterfligel wie oben, nur der Subcostalstreif setzt sich nach
einer gelb ausgefiillten Liicke wurzelwirts ineinem weiteren Rudiment fort; Flecke der Mittelbinde kleiner, 2 weisse Apicalflecke; Saumbinde reduziert,
nur in schwiirzlichen Rand-Wischflecken erhalten, die mit den weissen Strichflecken abwechseln. — Vorderfligellinge 43 mm., 9, typ. i. c. Riffarth,
Berlin. — Peru (Ucayali).
Leicht mit A. xovates novat. forma mzra zu verwechseln, merklich aber von dieser durch die glasige Beschaffenheit der hellen Vorder-
fligelflecke, durch den Mangel des Submedianstreifes und des Spitzenauslaufers am Keilfleck in der Zelle unterschieden.
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¢. Heliconius ethilla metalilis Butler.
Heliconius metalilis, Butler in Cist. Ent. Vol. 1, p. 167 (1873).
Heliconius metalilis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 75 (1805).
Heliconia meialilis, Snellen in Tijdschr. v. Ent. Vol. 38, p. 12 (1895).
Heliconius excoma metalilis, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46. p. 43; Gattg. Helicon. Vol. 2, p. 19 (1901).
Heliconius metabilis, Kirby, Cat. diurn. Lep. Suppl. p. 722 (1877).
Heliconia metabilis, Snellen in Tijdschr. v. Ent. Vol. 30, p. 15, t. 1, f. 2 (1887).
Venezuela : Puerto Cabello, Mérida. Curacao. Colombia.
J. Heliconius ethilla mentor Weymer.
Heliconius mentor, Weymer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 45, p. 22, t. 1 f. 3 (1884).
Helicontus eucoma mentor, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 43; Gattg. Helicon. Vol. 2, p. 19 (1gor).
Colombia : Cauca.
%. Forma semiflavida Weymer.
Heliconius metalilis var, semiflavidus, WWeymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 302 (1893).
Heliconius eucoma semiflavidus, Ritfarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 44; Gattg. Helicon. Vol. 2, p. 20 (1901).
Heliconius eucoma var. daguanus, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 286 (1896).
Colombia : Cauca, Rio Dagua.
¢. Heliconius ethilla claudia Godman u. Salvin.
Heliconius claudia, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 145 (188r).
Heliconius eucoma claudia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 44; Gattg. Helicon. Vol. 2, p. 20 (19012).
Panama: Colobre.
hk. Heliconius ethilla juntanus Riffarth.
Heliconius eucoma juntana, Riffarth (Staudinger M.S.) in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 196; Gatt. Helicon. Vol. r,
Pp- 14 (1900).
Heliconius eucoma juntana, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 44; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 20 (1901).
Colombia. Ecuador : Rio Juntas.
#. Heliconius ethilla cephallenia Felder.
Heliconius cephallenia, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 373, n° 539 (1865).
Heliconius eucoma cephallenia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 45; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 21 (1901).
Niederlandisch-Guayana : Surinam.
7. Heliconius ethilla aérotome Felder.
Heliconius aévotome, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 79 (1862).
Heliconius aérotome, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 373, t. 47 f. 6 (1865).
Heliconius eucoma aérotome, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 46; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 22 (1901).
Brasilien : Rio Negro sup. Peru : Tarapoto.
7. Heliconius gradatus \Veymer.
Heliconius gradatus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 61 (1905).
a. Heliconius gradatus gradatus Weymer.
Heliconius gradatus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 335, t. 5 f. 9 (1893).
Heliconius gradatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 47; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 23 (1901).
Peru : Pebas.
b. Heliconius gradatus thielei Riffarth.
Heliconius gradatus var. thielei, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 195; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 13 (1900).
Heliconius gradatus thilei, Riffarth, tbidem, Vol. 46, p. 47; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 23 (1901).
Franzésisch-Guayana : Cayenne.
8. Heliconius sulphureus \Veymer.
Heliconius sulphureus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 311, t. 4 f. 8 (1893).
Heliconius sulphureus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 47; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 23 (1901).
Heliconius sulphureus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 62 (1905).
Nord-West-Brasilien : Rio Negro |Thomar).
9. Heliconius paraensis [tiffarth.
Heliconius payvaensis, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 63 (1905).
14 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
a. Heliconius paraensis paraensis Riffarth.
Heliconius pavaensis, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 197 ; Gatt. Helicon, Vol. 1, p. 15 (1900).
Para.
b. Heliconius paraensis latus liffarth.
Heliconius paraensis var. latus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 197; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 197 (1900).
Nord-Brasilien : Itaituba (Rio Tabajoz).
to. Heliconius aulicus Weymer.
Heliconius aulicus, Weymer (Pl6tz MS.) in Ent. Zeit. Stett. Vol. 45, p. 19, t. 1, f. 1 (1884).
Helicontus aulicus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 48; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 24 (1901),
Helicontus aulicus, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 65 (1905).
Venezuela: Mérida, Tovar.
tt. Heliconius schulzi Riffarth. — Taf. |, Fig. 4, Q.
Heliconius schulzi, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 43, p. 405 (1899).
Heliconius schulzi Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 65 (1905).
Para.
12. Heliconius vetustus Butler.
Heliconius vetustus, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 66 (1905).
a. Heliconius vetustus vetustus Butler.
Heliconius vetustus, Butler in Cist. Ent. Vol. 1, p. 165 (1873).
Heliconius vetustus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 292 (1893).
Heliconius vetusius, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 50; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 26 (1901).
Heliconius velustus vecustus, Stichel u. Kiffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 67, f. 12 (1905).
Helicont:s clavissa, Maassen MS.
Britisch-Guayana : Demerara.
). Heliconius vetustus metellus Weymer.
Helicontus metellus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 290, t. 4, f. 1 (1893).
Helicontus vestustus metellus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 50; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 26 (1901).
Nord-Brasilien : Santarem.
13. Heliconius novatus Bates.
Heliconius novatus, Riffarth u. Stichel in Vierreich Vol. 22, p. 68 (1905).
a. Heliconius novatus novatus Bates.
Heliconius novatus, Bates in Trans. Ent. Soc. Lond. (3) Vol. 5, p. 539 (1867).
Heliconius novatus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 299 (1893).
Heliconius novatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 51; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 27 (1901).
Heliconius novatus novatus, forma principalis, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 69, f, 13 (1905).
Heliconius mirus var. illustris, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 298 (1893).
Heliconius spadicarius, Weeks in Proc. N.-Engl. Zool. Club, Vol. 2, p. 72 (1901); Ent. News Philad. Vol. 13
t. 7 (1902); Llustr. diurn. Lep. t. 9 (1905).
Heliconius arethusa, Plétz M S., Icon. t. 491.
Para (?). Peru. Bolivia : Rio Songo (Yungas), Coroico.
%. Forma mira Weymer.
Heliconius mirus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 296, t. 4, f. 2 (1893).
Heliconius novatus mtirus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 51; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 27 (1901).
Bolivia, Peru.
2. Forma leopardus Weymer.
Heliconius leopardus (Staudinger M S.), Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 319, t. 5, f. 11 (1893).
Heliconius novatus leopardus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 52; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 28 (1901).
Bolivia.
>. Heliconius novatus subnubilus Stichel, nov. subsp. — Taf. |, Fig. 4a, 2 (1).
Peru : Juanjuy.
(x) A. novatus subnnbilus. — Alis fulvis, anticis striga lata cellulari, altera submediana, macula discali rotunda, parte distali a medio ad
FAM. NYMPHALID AS I
Or
ce. Heliconius novatus obscurior Stichel, nov. subsp. (1).
Heliconius mirus var. obscurior, (Staudinger u.) Bang-Haas, Lep. Liste, n° 48, p. 49 (1904) nomen nud).
Ostl. Bolivia : Titicaca-See.
14. Heliconius hecale Fabricius. — Taf. |, Fig. 5, o
Papilio hecale, Fabricius, Gen, Ins. p. 254, n° 80, 81 (1777).
Papilio hecale, Herbst (Jablonsky u.), Naturs, Schmett. Vol. 4, p. 161, t. 76. f. 1 (1790).
Ajantis hecale, Hubner, Verz Schmett. p. 14 (1816).
Heliconia hecale, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 203 (1819).
Heliconius hecale, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 70 (1905).
Papilio urania, Muller, Naturs. Linné, Vol. 51, p. 584 (part.) t. 18, f. 2 (1774).
Heliconius uvania, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 344 (1893).
Papilio pasithoe, Cramer, Pap. Exot. Vol. 1, p. 25, 154. t. 17, f. A, B (1775).
Heliconia pasithoe, Doubleday in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 104 (1847).
Heliconius pasithoe, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr. p. 120, n° 2 (1869).
Heliconius pasithoe, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p.53; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 29 (1901).
Niederlandisch-, Britisch-Guayana.
1). Heliconius aristiona Hevwitson.
Heliconius aristiona, Riffarth u. Stichel, in Tierreich Vol. 22, p. 71 (1905).
a. Heliconius aristiona aristiona Hewitson.
Heliconia aristiona, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 1, Helicon. t. 1, f. 4 (1852),
Helicontus aristiona, Hopfter in Ent. Zeit. Stett. Vol. 40, p. 434 (1879).
Heliconius avistiona, \Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. Vol. 6, p. 334 (1893).
Heliconius aristiona, Riffarth in Berl. Ent, Zeit. Vol. 46, p. 56: Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 32 (1901).
Heliconius aristiona var. confluens, Bang-Haas (Staudinger u.), Lep. Liste, no 48, p. 49 (nom. nud.) (1904).
Bolivia : Rio Juntas. Peru : Ucayali, Chanchamayo.
%. Forma splendida Weymer.
Heliconius arvistiona var, splendidus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 334 t. 5, f. 8 (1893).
Heliconius artstiona splendidus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 57; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 33 (1901).
Bolivia : Rio Juntas.
b. Heliconius aristiona timaeus \WVeymer.
Heliconius timaeus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 331, t. 5, f. 6 (1893).
Heliconius avistioma timaeus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 57; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 32 (1901).
Peru : [quitos, Ucayali.
c. Heliconius aristiona bicoloratus butler.
Heliconius bicoloratus, Butler in Cist. Ent, Vol. 1, p. 167 (1873).
Heliconius aristiona bicoloratus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 57; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 33 (1901).
Heliconius aristrona var. peruana, Hopffer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 40, p. 434 (1879).
apicem nigris; serie 1
acularum obliqua subapicali, altera obsoletissima ultracellulari pallido-fulvis; posticis striga subcostali, apice, serie macularum
parvarem transversa discali nigris, maculis margihalibus nigris albidis alternis.
Vorderfligel im allgemeinen mit den Zeichnungen von 1, 7. 1. forma mira tibereinstimmend, aber fast die ganze distale Halfte, namentlich
in der Gegend der gelben Medianbinde, schwirzlich getribt. Deutlich erhalten ist nur die aus zwei grésseren mittleren und zwei kleineren iiusseren F’lecken
bestehende subapieale Fleckenreilie: nalie dem Rande 3 triibweisse Apicalflecke. Keilfleck stark entwickelt, mit unmittelbar anschliessendem breitem
Spitzenauslaufer. Hinterer Medianfleck isoliert, die anderen Flecke mehr oder weniger in schwirzlicher Bestéubung unter sich und mit dem Apicalfeld
verflossen. Submedianstreif breit, von der Mitte an in distaler Richtung plotzlich verschmilert, im schwiarzlich itberstiubten Hinterwinkel endigend. —
Hinterfligel mit schwirzlichem, in der Mitte unterbrochenem Subcostalstreif. Distalrand abwechselnd schwarz und gelblich weiss gesiiumt, Apex
schmal schwarz mit einem briiunlich-weissen (leck. Hinter der Zelle eine aus weit voneinander getrennten, kleinen schwarzen Flecken bestehende
Mittelbinde. die Anfangs- und Endflecke verkleinert oder fehlend. — Unterseite fahler in der Parbung, ohne wesentliche Verschiedenheiten, nur der
Spitzenauslaufer des Zellfieckes im Vorderfligel abgetrennt, Apicalflecke deutlicher, auf 5 vermehrt, Besiumung des Hinterfliigels schirfer schwarz und
weiss. — Vorderfligellange 33-43 mm. — 2 © typ. i. c. Riffarth, Berlin. — Peru (Juanjuy).
1) H. nqatus obscurior. — G Supra signaturis H. nowaté typ., sed colore fundamentali castanea pro fulva; © signaturis discalibus fuscis
magis extensis ut in forma wzra, colore fundamentali mari aequali.
Grandfarbe beider Fligel oben kastanienbraun, dunkler als bei der Stammform aber nicht so braun wie bei forma /eopardus. G -im tibrigen
mit 4. naatus nvatus im allgemeinen iibereinstimmend, der Wurzelausliufer des Keilfleckes in der Zeile des Vorderfliigels wol)l etwas schwiicher
ausgebildet, die gelbe Querbinde an der proximalen Berandung von der braunen Basalflache etwas mehr eingeschrinkt, Endzellfleck isoliert, hinterer
Medianfleck schwacher schwarz beschuppt. — © mit grésserem Keilfleck in der Vorderfliigelzelle, Endzellfleck yerbreitert und mit dem Vorderrandstreit
zusammenhangend, Medianflecke stairker und intensiver aufgetragen, das schwarze Apicalfeld etwas verbreitert, wodurch die gelbe, an sich etwas triiber
gelarbte Querbinde wesentlich eingeengt und zerstiickelt wird, ahnlich wie bei forma mzra. Hinterfliigel fast wie bei forma /eopardus mit Mittelbinde
aus einzelnen langlichen Flecken, die distal grosser werden; Randbinde indessen nicht so breit, von der Mitte des Fligelrandes an bis zum Apex nur
eine schmale schwarzliche Besiumung. — Vorderfligellinge 45-48 mm., G, 9 typ. i. c. Riffarth, Berlin. — Ostl. Bolivia : Titicacasee.
16
MA)
h.
1.
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
. Heliconius aristiona phalaris Weymer.
Heliconius bicoloratus var. phalaris, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 334, t. 5 f. 7 (1893).
Heliconius avistiona phalaris, Riffarth in Berl, Ent. Zeit. Vol. 46, p. 57; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 33 (1901).
Unteres Amazonas-Gebiet ; Rio Madeira.
. Heliconius aristiona messene Felder.
Heliconius messene, C, u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 418 (1862).
Heliconius avistiona messsene, Riffarth in Ber]. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 60; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 36(1901).
Heliconius sikinos, Plétz M. S., Icon. t. 488.
Colombia.
.. Heliconius aristiona euphrasius Weymer.
Heliconius euphyasius, Weymer (u. Maassen) in Reiss u. Stiibel, Reisen Siid-Amer. Lep. p. 21, 116, t. 2 f. 2 (1890).
Heliconius avistiona euphvasius, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 59; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 35 (1901).
Colombia, Ecuador (Archidona, Coca).
. Heliconius aristiona euphone Felder.
Heliconius euphone, (Kollar MS.), C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 418 (1862).
Heliconius avistiona euphone, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 62; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 34 (1901).
Heliconius tleson, Plotz, MS. Icon. t. 250.
Colombia. Ecuador : Chanchamayo, Huallaga, Sarayacu, Coca.
Heliconius aristiona tarapotensis Riffarth.
Heliconius avistiona tarapotensis, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 59; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 35 (1go01).
Heliconius avistiona tarapotensis, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 76, f. 14 (1905).
Peru : Tarapoto.
. Heliconius aristiona lenaeus Weymer.
Heliconius lenaeus, Weymer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 51, p. 284 (1890).
Heliconius lenaeus, WWeymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 338, t. 5 f. ro (1901).
Heliconius aristiona lenaeus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 58; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 34 (1901).
Heliconius colepta, Maassen M.S.
Ecuador : Loja, Archidona, Peru : Huayamba. Colombia : Cauca.
Heliconius aristiona idalion \Veymer.
Heliconius idalion, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 337 (1893).
Heliconius avistiona tdalion, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 60; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 36 (1901).
Heliconius euphone var. i) , C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2), p. 375 (1865).
Heliconius aganippe, Plotz M.'S., Icon. t. 488.
Colombia.
:. Heliconius aristiona aurora Bates.
Heliconius aurora, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 555 (1862).
Heliconius aurora, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 75, t. 31 (1885).
Heliconius avistiona aurora, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 54; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 30 (1901).
Peru, Oberer-Amazonas, Ecuador, Bolivia.
%. Forma elegans Weymer.
Heliconius elegans, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 326, t. 5 f. 3 (1893).
Heliconius aristiona elegans, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46. p. 55; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 31 (1901).
Bolivia, Peru, Amazonas : Itaituba.
9. Forma florida Weymer.
Heliconius flovidus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 329, t. 5 f. 4 (1893).
Heliconius aristiona flovidus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p.55; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 31 (1901).
Bolivia, Ecuador, Peru, Amazonas.
v. Forma seraphion Weymer.
Heliconius seraphion, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p 330, t. 5 f. 5 (1893).
Heliconius aristiona seraphion, Ritfarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 56; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 32 (19012).
Peru : Iquitos.
Heliconius aristiona arcuella Druce. — Taf. 2, Fig. 6, o
Heliconius avcuella, Druce in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 156 (1874).
Heliconius avistiona arcuella, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 55; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 31 (1go1r).
Peru, Ecuador.
FAM. NYMPHALIDZ® ° 17
m. Heliconius aristiona staudingeri \Weymer.
Heliconius staudingeri, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 324, t. 5 f. 2 (1893).
Heliconius avistiona staudingeri, Riffarth in Ber], Ent. Zeit. Vol. 46, p. 59; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 35 (rgor).
Peru : Huallaga.
x. Forma pretiosa Weymer.
Helicon
Heli
tus staudingeri var. pretiosus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 325 (1893).
onius artstiona pretiosus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 60: Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 36 (1901).
Peru : Sarayacu.
16. Heliconius ithaka Felder.
Heltconius tthaka, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 80 (1905).
a. Heliconius ithaka ithaka Felder.
Heliconius tthaka, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 418 (1862); Reise Novara, Vol. 2 (2', p. 372, t. 47
f. 5 (1865).
Heliconius ithaka, Riftarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 71; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 37 (1901).
Colombia.
». Heliconius ithaka vittatus Butler.
Heliconius vitiatus, Butler in Cist. Ent. Vol. 1, p. 166 (1873).
Heliconius ithaka vittatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 62; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 38 (tgor).
Colombia.
c. Heliconius ithaka marius \Veymer.
Heliconius marius, Weymer (u, Maassen) in Reiss u. Stitbel, Reisen Siid-Amer. p. 21, 116, t. 2 f. 1 (1890).
Heliconius ithaka maryius, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 62; Gatt. Helicon. Vol. 2, p..38 (1gor).
Colombia : Llanos de San Martin, Muzo.
17. Heliconius pardalinus Bates.
Heliconius pardalinus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 82 (1905).
a. Heliconius pardalinus pardalinus Bates.
Helicontus eucoma var. pardalinus, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23 p. 555 (1862).
Heliconius pardalinus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 62; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 38 (1901).
Heliconius pardalinus pardalinus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 84, f. 15 (trans.) (1905).
Oberes Amazonas-Gebiet; Ecuador (?).
). Heliconius pardalinus lucescens Weymer.
Heltconius pardalinus var. lucescens, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 321 (1893).
Heliconius pardalinus lucescens, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 63; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 39 (1901).
Oberes-Amazonas-Gebiet : Santarem, Manicoré.
c. Heliconius pardalinus radiosus Butler.
Heliconius radiosus, Butler in Cist. Ent. Vol. 1, p. 166 (1873).
Heliconius pardalinus radiosus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 64; Gatt. Helicon, Vol. 2, p. 40 (1901).
Peru, Oberer-Amazonas, Ecuador, Bolivia.
%. Forma dilata Weymer.
Heliconius aerotome var. dilatus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 323 (1893).
Heliconius pardalinus dilatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 64; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 40 (1901).
Peru : Yurimaguas, Ucayali; Ecuador : Sarayacu.
d. Heliconius pardalinus maeon Weymer.
Heliconius maeon, Weymer in Ent. Zeit. Stettin, Vol. 51, p. 287 (1890).
Heliconius pardalinus maeon, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 65; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 41 (1901).
Vaterland unbekannt.
e. Heliconius pardalinus tithoreides Staudinger.
Heliconius tithoreides, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 12, p. 404 (1900).
Heliconius pardalinus tithoreides. Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 65; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 41 (1901).
Peru : Urabamba, Ucayali, Hillapani.
18 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
18. Heliconius fortunatus Weymer.
Heliconius fortwratus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, ». 86 (1905).
a. Heliconius fortunatus fortunatus \Weymer.
Heliconius fortunatus, Weymer in Ent. Zeit. Stettin, Vol. 45, p. 21, t. 21 f. 4 (1884).
FHelicontus fortunatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 66; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 42 (t90r).
Unterer-Aimazonas : Villa-Bella.
b. Heliconius fortunatus spurius Weymer.
Heliconius spurius, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 309, t. 4 f. 7 (1893).
Heliconius fortunatus spurius, Riffarth in Berl, Ent. Zeit. Vol. 46, p. 67; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 43 (1901).
Unterer-Amazonas : Massauary, Rio Maues,
19g. Heliconius sergestus \Veymer.
Heliconius sergestus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 339, t. 5 f. 12 (1893).
Heliconius sergestus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p.67; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 43 (1901).
Heliconius sergestus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 88 (1905).
Peru : Tarapoto.
20. Heliconius ennius \Weymer.
Heliconius ennius, Weymer in Ent. Zeit. Stettin, Vol. 51, p. 283 (1890).
Heliconius ennius, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 306, t. 4 f. 5 (1893).
Heliconius ennius, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 67; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 43 (1901).
Heliconius ennius, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 89 (1905).
Amazonas : Ega, Teffé, Fonteboa, Sao Paulo de Oliven¢a.
%. Forma nigrofasciata Weymer.
Heliconius ennius var. nigrofasciatus, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 307, t. 4 f. 6 (1893).
Heliconius ennius nigrofasctatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 68; Gatt. Helicon. Vol. 2. p. 44 (1901).
Nord-Brasilien : Rio Madeira.
21. Heliconius quitalenus Hewitson.
Helicontus quitalenus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 90 (1905).
a. Heliconius quitalenus quitalenus Hewitson.
Heliconia quitalena, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 1, t. Helicon. 1 f. 3 (1852).
Heliconius quitalena, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 69; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 45 (1901).
Ecuador : Archidona (Rio Napo).
b Heliconius quitalenus felix \Weymer.
Heliconius felix (Staudinger M.S.), Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 315, t. 4 f. 10 (1893).
Heliconius quitalena felix, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 69; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 45 (1gor).
Peru : Rioja; Bolivia : Rio Juntas, Rio Songo,
%. Forma concors Weymer.
Heliconius felix var. concors, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 317 t. 4. f. 11 (1893).
Heliconius quitalena concors, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 70;Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 46 (1901).
Peru, Bolivia : Neben der Hauptform.
c. Heliconius quitalenus versicolor Weymer.
Heliconius versicolor, \Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 6, p. 317 t. 4, tf. 12 (1893).
Heliconius quitalena versicolor, Riffarth in Berl, Ent. Zeit. Vol. 46, v.71; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 47 (1901).
Nord-Brasilien : Rio Madeira.
d. Heliconius quitalenus sisyphus Salvin.
Heliconiussisyphus, Salvin in Ann. Nat. Hist. (4) Vol. 7, p. 413 (1871).
Heliconius quitalena sisyphus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 70; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 47 (1901).
Heliconius quitalenus sisyphus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 93 f. 16 (1905).
Peru : Cosnipata-Tal, Marcapata.
%. Forma jonas Weymer.
Heliconius jonas, Weymer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris) Vol. 6, p. 307 (1893).
Heliconius quitalena jonas, Riffarttrin Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 70; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 46 (1901).
Peru : Jurimaguas. Amazonas : Sao Paulo de Olivenca.
FAM. NYMPHALID/® 19
22. Heliconius anderida Hewitson.
Heliconius anderida, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 94 (1905).
a, Heliconius anderida anderida Hewitson.
Heliconia anderida, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 1, Heliconia t. 1, f. 2 (1852).
Heliconius anderid@a, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 150 (1881).
Helicontus clara andevida, Riffarthin Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p: 74; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 50 (1901).
Heliconius sagora, Plétz M S. Icon. t. 487.
Venezuela : Porto Cabello. Colombia. Honduras.
6b. Heliconius anderida melicerta Bates.
Helicontus melicerta, Bates in Ent. monthly Mag. Vol. 3, p. 87 (1866).
_Heliconius melicerta, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 144 t. 16, f. 12, 13 (1881
Heliconius anderida melicerta, Stichel u. Riffarth in Tierreich. Vol. 22, p. 95, f. 17 (1905).
Papilio clara, Fabricius. Ent. Syst. Vol. 3 (1), p. 161 (1793) (1).
Melinaea clara, Hibner, Verz.Schmett. p. 11 (part.) (1816).
Heliconia clara, Godart (Latreille u.) in Enc. Meth. Zool. Vol. 9, p. 217 (1819).
Helicontus clara, Weymer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 36, p. 384 t. 2, f. 6 (1875).
Heliconius clara, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 72: Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 48 (1901).
Heliconius etholea, Pl6tz, MS., Icon. t. 248.
Colombia, Panama, Guayana (Surinam) ?
c. Heliconius anderida semiphorus Staudinger.
Heliconius metaphorus var. semiphorus, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 284 (1896).
Heliconius clara semiphorus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 73; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 49 (1901).
Helicontus anderida semiphorus, Stichel u. Riffarth in Tierreich. Vol. 22, p. 97 (1905).
West- u. Siid- Colombia.
- Forma holcophora Staudinger.
Heliconius semiphorus aberr. holcophorus, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 285 (1896).
Heliconius clara holcophorus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 74; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 50 (1901).
Colombia : Rio Dagua.
d. Heliconius anderida annetta Riffarth.
Heltconius clara var. annetta, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 187; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 16 (1900).
Helicontus clara annetta, Riffarth, idem, Vol. 46, p. 73; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 49 (1901).
Heliconius anderida annetta, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 97 (1905).
Colombia.
¢. Heliconius anderida albucilla Bates.
Heliconius albucilla, Bates in Ent. month. Mag. Vol. 3, p. 88 (1866).
Heliconius albucilla, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 144 (1881)
Heliconius clara albucilla, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 74; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 74 (1901).
Heliconius andertda albucilla, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol 22, p. 98 (1905).
Heliconius albicilla, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 138 (1871).
Zentral-Amerika : Panama.
j. Heliconius anderida zuleika Hewitson. — Pag. 7, Fig. 4.
d..
Heliconia zuleika, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 1, t. Helicon. 3, f. 10 (1854).
Heliconius zuleika, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 147 (1881).
Heliconius clara zuletka, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 100; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 52 (1901).
Heliconius anderida zuleika, Stichelu. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 98 (1905).
Heliconia zudeika, Boisduval, Lép. Guatém. p. 30 (1870).
Zentral-Amerika ; Nicaragua, Honduras, Panama, Guatemala, Costa Rica.
Forma albipunctata Riffarth.
Heliconius zuletka ab, albipunctata, Riffarth (Staudinger MS.) in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 199; Gatt. Helicon,
Vol. 1, p. 17 (1900).
Heliconius clara albipunctata, Riffarth, idem, Vol. 46, p.77; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 53 (1901).
Panama : Chiriqui.
(1) Papiliv clara, Fabr. (1793) ist praeoccupiert durch Pag. clarus Cramer (1775), der Name daher wegen Homonymie zu verwerten. An
seine Stelle tritt das nachstalteste Synonym : /. melicerta Bates (1866). Als giltige Bezeichnung der Collectiv-Species ist ferner der Alteste tir eine ihrer
Formen aufgestellte Name anzusehen, d. i. : H. anderida Hew. (1852). Die hierunter verstandene Form riickt zum typischen Vertreter der Art vor,
wahrend H. melicerta in die Reihe der Unterarten eintritt. — Régles internationales de la nomenclature zooloogique, Paris 1905, Art. 35, 36.
20 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
. Forma chrysantis Godman u. Salvin.
Heliconius chyysantis, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 146 (1881),
Heliconius clava chrysantis, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 75; 159 (corr.); Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 51
(1901).
Nicaragua.
‘Y. Forma discomaculata Weymer.
Heliconius discomaculatus, Weymer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 51. p. 289 (1890).
Heliconius clara discomaculatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 75; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 51 (1901).
Honduras.
o. Forma jucunda Bates.
Heliconius jucundus, Bates in Ent. monthly Mag. Vol. 1, p. 56 (1864).
Heliconius zuleika var, jucundus, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 139 (1871).
Heliconius jucundus, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 146 (part.) t. 17 f. 1, 2 (1881).
Heliconius clara jucundus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 76; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 52 (1901).
Panama.
o
Forma xanthica Bates.
Heliconius xanthicus, Bates in Ent. monthly Mag. Vol. 1, p. 57 (1864).
Heliconius zuletka var. xanthicus, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 139 (1871).
Heliconius jucundus var. xanthicus, Godman u, Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol.1, p. 146, t. 16 f. 10, 12 (1881).
Helicontus clara xanthicus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 75; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 51 (1901).
Panama.
Heliconius anderida fornarina Hewitson.
i)
Heliconia fornarina, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 1, Helicon. t. 3 f. 9 (1854).
Heliconius fornayina, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 145 (1881).
Heliconius clara fornarina, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 77; Gatt. Helicon. Vol. 2, p.
3 (1901).
Guatemala.
Species dubiz :
— Heliconius arcuatus (Goeze) Kirby.
Scopoli, Annus V Hist. nat. p. 113 (1772).
Papilio Heliconius arcuatus, Goeze, Ent. Beytr. Vol. 3(t', p. 114 (1779).
Heliconius (2) avcuatus, Kirby, Cat. diurn. Lep. Suppl. p. 721 (1877).
Heliconius avcuatus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. ror (1905).
Habitat ?
— Heliconius euclea Godart.
Heliconia euclea, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 220 (1819).
Heliconius euclea, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. ror (1905).
Antillen(?).
Cohors Il. CYDNOFORMES
Antennen schwarz. Oberseite dey Fliigel schwarz und schwarz-blau, stark glanzend, mit gelben oder weissen Binden
odey Flecken. Abdomen wenig tiber die Hinterfliigel hinausvagend.
23. Heliconius cyano Doubleday.
Heliconius cydno, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 102 (1905).
a. Heliconius cydno cydno Doubleday.
Heliconius cydno, Doubleday (u. Hewitson) in Doubleday, Westwood u. Hewitson, Gen. diurn. Lep. Vol. 1
p- 103, t. 15 f. 3 (1847). :
Heliconius cydno, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 82; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 58 (1901).
Heliconius cydno, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 2 (Suppl.), p. 668 (1901).
Colombia : Muzo, Llanos de San Martin, Honda, Rio Dagua, Medellin.
FAM. NYMPHALIDA® al
). Heliconius cydno cydnides Staudinger.
Heliconius cydno var. cydnides, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 77 (1885).
Heliconius cydno cydnides, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 83; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 59 (1901).
Heliconius interrupta, Plétz M.S., Icon. t. 508.
Colombia : Antioquia, Cauca.
%. Forma subcydnides Staudinger.
Heliconius cydno var. subcydnides, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 289 (1896).
Heliconius cydno subcydnides, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 83; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 59 (1901).
Heliconius cydno cydnides forma subcyvdnides, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 104, f. 18 (1905).
co
- Forma epicydnides Staudinger.
Heliconius cydno var, epicydnides, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 289 t. 6 f. 2 (1896).
Helicontus cydno epicydnides, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 48; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 60 (1901).
Colombia : Cauca, Rio Dagua.
c. Heliconius cydno alithea Hewitson.
Heliconia alithea, Hewitson, Equat. Lep. p. 10 (1869); Exot. Butt. Vol. 4, t. Helicon. t. 6 f. 18 (1871).
Heliconius cvdno alithea, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 82; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 58 (1901).
%. Forma haenschi Riffarth.
Heliconius cydno ab. haenschi, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 200; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 18 (1900).
Heliconius cydno haenschi, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p. 83; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 59 (1901).
Ecuador : Balzapamba.
d. Heliconius cydno broncus Stichel, nov. subsp. (1). — Taf. 2, Fig. 6%, ©.
Peru ?
¢. Heliconius cydno hahneli Staudinger.
Heliconius hahneli, Staudinger (u. Schatz.). Exot. Schmett. Vol. 1, p. 77, t. 31 (1885).
Heliconius cydno hahneli, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 82; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 58 (1901).
Venezuela: Merida.
f. Heliconius cydno temerinda Hewitson.
Heliconia temerinda, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 5, Tithorea u. Helicon. t. 7 f. 23 (1873).
Heliconius tamarinda, Kirby, Cat. diurn. Lep. Suppl. p. 722 (1877).
Heliconius cydno termerinda, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 82; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 58 (1901).
Colombia: Villagomes, San Augustin.
y. Heliconius cydno hermogenes Hewitson.
Heliconia hermogenes, Hewitson, Exot. Butt. Vol: 2, Helicon. t. 4 f. 12 (1857).
Heliconius cydno hermogenes, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 79; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 55 (1901).
Colombia : Cauca.
/. Heliconius cydno chioneus Bates.
Heliconius chioneus, Bates in Ent. monthly Mag. Vol. 1, p. 58 (1864).
Heliconius cydno var. chioneus, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 140 (1871).
Heliconius chioneus, Godman u. Salvin in Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 156, t. 18 f. 7, 8 (1881).
Heliconius chioneus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 77, t. 31 (1885).
Heliconius cydno chioneus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 81; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 57 (1901).
Panama, Colombia : Medellin, Rio Dagua.
7. Heliconius cydno galanthus Bates.
Heliconius galanthus, Bates in Ent. monthly Mag. Vol. 1, p. 58 (1864).
1 H. cydno broncus. — Supra atrocaeruleus; alis anticis fascia lata bifurcata flava, macula parva albida anali; posticis serie macularum
dentiformium albarum marginalium-
Nahe H.cydno alithea, dem diese Subspecies im Vorderfliigel ahnelt und H/.cydno cydno, dem sie sich in der Zeichnung des Hinterfliigels nahert.
Die blassgelbe, vorn gegabelte Binde des Vorderfligels sehr breit, von den schwarzen Adern geschnitten, der in der Zelle liegende Teil in proximaler
Richtung schrig gegen die Subcostalis gestellt, vorn etwas verschmalert; distale Begrenzung der Binde bauchig aufgetrieben, das Ende randlich hinter
dem hinteren Medianast abgeschnitten, im Hinterwinkel noch ein kleiner weisslicher Fleck. — Hinterfliigel mit weisser, aus einzelnen zahnartigen
oder kegeltormigen Flecken gebildeter Randbinde, die Flecke der Lange nach in der Mitte schmal schwarzlich schattiert. — Unterseite fahler, Vorder-
flugelbinde weisslich gelb, Fleck im Hinterwinkel und ein zweiter Randfleck vor demselben weiss. Vorderrand des Hinterfliigels schmal gelb, distal in Rot
aibergehend; Saumflecke etwas spitzer; quer vom Hinterrand aus iiber den Fliigel zwei rotliche Binden, die vordere undeutlich, verktirzt, die hintere
breiter, deutlicher, langer. — Vorderfligellinge 42 mm.; x 9 coll. Riffarth, Berlin. — Peru? (Genaues iber Herkommen war nicht zu ermitteln).
22 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Heliconius galanthus, Godman u, Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 155 (part.) (1881); Vol. 2, Suppl.
p. 667 (1901).
Heliconius cydno galanthus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 80; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 56 (1901),
Heliconius piera, Plotz, M S. Icon. t. 509.
Honduras, Guatemala, Costa Rica, Chiriqui, Peru.
%. Forma diotrephes Hewitson. — Taf. 2, Fig. 7, ©.
Heliconia diotrephes, Hewitson in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 33 (1869).
Heliconius cydno diotrephes Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 81: Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 57 (1901).
Nicaragua, Guatemala.
6. Forma stiibeli Riffarth.
Heliconius cydno ab. stibeli, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 199; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 17 (1900).
Heliconius cydno stiibeli, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p. 81; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 57 (1901).
Costa Rica.
j. Heliconius cydno zelinde Butler.
Heliconius zelinde, Butler in Ann, Nat. Hist. (4), Vol. 3, p. 17, t. 9, f. 1 (1869).
Heliconius cydno zelinde, Riffarthin Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 80; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 56 (1go1).
West-Colombia : Rio San Juan, Rio Dagua, Rio Juntas.
24. Heliconius weymeri Staudinger.
896).
Heliconius weymeri, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit Lep. (Iris), Vol. 9. p. 287, t. 6, f. 5 (1
2, p. 60 (1901).
Heliconius cydno weymeri, Riftarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46. p. 84; Gatt. Helicon. Vol.
Heliconius weymert, Stichel u. Riffarthin Tierreich, Vol. 22, p. 107 (1905).
a. Forma gustavi Staudinger.
Heliconius weymert ab, gustavi, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 287. t. 6, f. 1 (1896).
Heliconius cydno gustavi, Riffarthin Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 84; Gatt. Helicon. Vol. 2. p. 60 (1901).
Siid-Colombia : Cauca, Rio Dagua.
25. Heliconius pachinus Salvin.
Heliconius pachinus, Salvin in Ann. Nat. Hist. (4), Vol. 7. p. 414 (1871).
Heliconia pachinus, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 5, Helicon. t. 8, f. 26 (1875).
Heliconius pachinus, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop, Vol. 1, p. 158, t. 18, f. 11 (1801).
Heliconius pachinus, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 108 (1905).
Heliconius pochinus, Kirby, Cat. diurn. Lep. Suppl. p. 722 (1877).
Heliconius pachynus, Buchecker, Syst. Ent. Lep. t. 55. f. 14 (1880).
Zentral-Amerika : Chiriqui, Costa Rica.
Cohors Ill. MELPOMENEFORMES
Antennen schwarz, langer als die Hélfte des Vorderrandes des Vorderfliigels. Oberseite der Fliigel schwarzbraun, selten
blauglinzend, mit roten, gelbyoten bis schwefelgelben oder weissen oder aus dtesen Farben susammengesetzten
Zeichnungen im Discus des Vorderfliigels, dessen Basalfeld haufig vot bestiubt; Hinterfliigel einfarbig odey mit
voten bis gelben Querbinden, allein oder mit Strahlenzeichnung. Abdomen nur wenig tiber den Hinterfliigel
hinausvagend .
26. Heliconius rubellius Grose Smith u. Kirby.
Heliconius rubellius, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 1, Helicon. t. 1, f. 1, 2 (1892).
Heliconius rubellius, Riffarth in Berl. Ent Zeit. Vol. 46, p. 87; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 63 (1901).
Heliconius yubellius, Stichel u. Riffarth in Tierreich. Vol. 22, p. 110 (1905).
Colombia.
27. Heliconius heurippa Hewitson.
Heliconia heurippa, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 1, Helicon. t. 2 f. 7 \1854). :
Heliconius heurippa, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 87; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 63 (1901).
Heliconius heurippa, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 110 (1905).
Siid-Colombia : Llanos de San Martin.
FAM. NYMPHALIDZ® ~ 23
28. Heliconius melpomene Linné.
Heliconius melpomene, Riffarth in Berl. Ent. Zei:. Vol. 47, p. 157, 163 (1903).
Heliconius melpomene, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 110 (1905).
a. Heliconius melpomene melpomene Linné.
— Petiver, Gazophyl. Nat. Vol. 1, t. 4. 2 (1702).
— Résel, Insecten-Belust. Vol. 4, p. 27, t. 3 f. 6 (1761).
— Seba, Thesaurus, Vol. 4, t. 13 f. 15, 16 (1715).
Papilio melpomene, Linné, Syst. Nat. (10), p. 467 (1758); Mus. Lud. Ulr. p. 332 (1764),
Papilio melpomene, Cramer, Pap. Exot. Vol. 2, p. 143, t. 191 f. C (1777).
Papilio melpomene, Herbst (Jablonsky u.) Nat. Schmett. Vol. 4, p. 132, t. 72 f. 3 (17¢0).
Sunias melpomene, Hubner, Verz. Schmett. p. 12 (1816).
Heliconia melpomene, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool. Vol. 9; p. 208 (1819).
Laparus melpomene, Billberg, Enum, Insect. p. 77 (1820).
Phlogris melpomene, Hiibner, Exot. Schmett. Vol. 2, t. 5 f. 1-4 (1822-26).
Heliconius melpomene, Blanchard in Hist. Nat. Ins. Vol. 3, p. 436 (1840).
Heliconius melpomene, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 557 (1862).
Heliconius melpomene, Moschler in Ent. Zeit. Stett. Vol. 39, p. 426 (1878).
Heliconius melpomene, Aurivillius in Sv. Akad. Handl. Vol. 19, n° 5, p. 48 (1882).
Heliconius melpomene, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 78 (part.), t. 32 (?) (1885).
Heliconius melpomene, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 88; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 64 (1901).
Heliconia melpomene, Oberthtr, Et. Ent. Fasc. 21 t. 4 f. 37-39 (1902).
Heliconius melpomene, Kaye in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 168 (1904).
Heliconius melpomene melpomene, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 111 f. 19 (1905).
Papilio melpemone, Scopoli. Annus V, p. I1I (1772).
Franzosisch-, Niederlandisch-, Britisch-Guayana, Trinidad (?), Nord-Brasilien : Amazonenstrom von der
Miindung des Rio Tocantin bis Rio Madeira, Oberlaufin Peru. Ecuador 6stlich der Anden; S. Bolivia.
%. Forma atrosecta Riffarth.
Heliconius melpomene ab. atrosecta, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 202; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 20 (1900).
Heliconius melpomene atrosecta, Riffarth, idem, Vol. 46, p. 89; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 65 (1901).
Heliconia thelxiope-melpomene var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21 t. 4 f. 42 (?), 48 (1902).
Amazonas : Obidos.
co
. Forma melpomenides Riffarth.
Heliconius melpomene ab. melpomenides, Riffarth in Berl, Ent. Zeit. Vol. 45, p. 203; Gatt. Helicon. Vol. 1, p.21 (1900).
Heliconius melpomene melpomenides, Riffarth, idem, Vol. 46, p. 89; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 66 (1901).
Heliconia thelxtope-melpomene var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21 t. 4 f. 46; t..5 f. 50 (1902).
Niederlandisch-Guayana : Villa Bella.
‘y. Forma lucinda Riffarth.
Heliconius melpomene var. lucinda, Riffarthin Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 203; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 21 (1900).
Heliconius melpomene lucinda, Riffarth, idem, Vol. 46, p. 89; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 65 (1901).
Heliconia thelxtope-lucia var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 5 f. 51, 52, 59 (1902).
Amazonas : Massauary {Rio Maues).
or
- Forma lucia Cramer.
Papilio lucia, Cramer, Pap. Exot. Vol. 4, p. 117, t. 350 f. E, F (1781).
Papilio lucia, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 4, p. 134, t. 72 f. 4, 5 (1790).
Sunias lucia, Hiibner, Verz. Schmett. p. 12 n° 53 (1816).
Heliconia lucia, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 208 (1819).
Helicontus melpomene var. lucia, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 558 (1862).
Heliconius lucia, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 78 (1885).
Helicontus melpomene lucia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p.90; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 66 (1901).
Heliconia thelxiope-lucia var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 5 f. 54, 55, 56 (1902).
Niederlandisch-Guayana; Nord-Brasilien : Para, Rio Tabajoz.
o
. Forma karschi Riffarth.
Helicontus melpomene ab. karscht, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 203; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 21 (1900)
Heliconius melpomene karschi, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p. 90; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 66 (1901).
Para; Niederlandisch-Guayana.
(1) Siehe Fussnote folg. Seite.
24. LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
+b. Heliconius melpomene aphrodyte Staudinger.
Heliconius aphrodyte, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 290, t. 6 f. 4 (1596),
Heliconius melpomene aphrodyte, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 101; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 77 (1901).
Heliconia vesta-aphrodyte. Ch. Oberthtr, Et. Ent. Fasc. 21, t. 9 f. 103 (1902).
Bolivia : Bueyes, Rio Juntas (Prov. Cochabamba).
c. Heliconius melpomene funebris Moéschler (1).
Heliconius funebris, Moschler in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 314, t. 3 f. 8 (1876).
Helicontus crato forma funebris, Méschler, ibidem, Vol. 32, p. 316 (1883).
Helicontus melpomene funebris, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 91; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 67 (1901).
Heliconia thelxiope-cybele var., Ch. Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 21, t.7 f. 79, 80, 81 (1902).
Niederlandisch-Guayana.
%. Forma diana Riffarth.
Heliconius melpomene ab. diana, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 204; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 22 (1900).
Heliconius melpomene diana, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p, 129; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 67 (1901).
Heliconia thelxiope-cybele var., Ch, Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 5 f. 60; t. 6 f. 61, 63; t. 6 f. 62 (trans. ad
form. deinia) (1902).
Heliconius gaea, Plotz M S., Icon. t. 532.
Niederlandisch- und Franzésisch-Guayana.
6. Forma deinia Méschler.
Helicontus deinia, Méschler (Pl6tz M.S.) in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 315 (1876).
Heliconius erato forma deinia, Méschler in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 32, p. 316 (1883).
Heliconius melpomene detnia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 91; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 67 (1901)
Heliconius thelxtope var. nutabilis, Butler in Cist. Ent. Vol. 2, p. 151 (1
Heliconius thelviope vay., Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 5
Heliconta thelxiope-cybele var., Ch. Oberthtr, Et. Ent. Fasc. 21, t. 6 f. 64, 65; t 6 f. 66, 67 (trans. ad form.
faustina) (1902).
877).
58
Niederlandisch- und Franzésisch-Guayana ; Unterer-Amazonenstrom (Serpa).
Yy. Forma cybele (Cramer) Stichel (1).
Papilio cybele, Cramer (non Fabricius, 1775), Pap. exot. Vol. 2, p. 139, 148, t. 88 f. A (177
Heliconia cybele, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. diurn. Lep Vol. 1, p. 104 (184
Heliconius melpomene var. cybele, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol, 23, p. 558 (1862).
Heliconius erato forma cybele, Moschler in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 32, p. 316 (1883).
Heliconius melpomene cybele, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol..46, p. 92; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 68 (1901).
Heliconia thelxiope-cybele var., Ch. Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 21, t.7 f. 76,77; £ 78 (trans. ad form. principalem).
7, 1779).
7):
Niederlandsch- und Franzésisch-Guayana; Nord-Brasilien : Rio Negro, Rio Madeira, Unterer-Ama-
zonenstrom.
o. Forma faustina Staudinger.
Heliconius faustina, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 78 (1885).
Heliconius melpomene faustina, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 92; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 68 (1901).
Heliconia thelxiope-cybele var.. Ch. Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 6 f. 68, 60; t. 7 f. 74, 75 (1902).
Heliconius justina, Boisduval M S. :
Niederlandisch- und Franzésisch Guayana.
d. Heliconius melpomene tyche Bates.
Heliconius melpomene var. tyche, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 559 (1862).
Heliconius melpomene tyche, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 92; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 68 (1901).
Heliconia thelvxiope var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 9, f. 100, 101 (1902).
Heliconius jussa, Boisduval M S.
Unterer Amazonenstrom : Serpa, Massauary.
%. Forma hippolyte Bates.
Heliconius melpomene var, hippolyte, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 559 (1862).
Heliconius melpomene hippolvte, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 92; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 68 (1901).
Heliconia thelxiope var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 9, f. 98, 99 (trans. ad form. principal.).
Unterer-Amazonenstrom : Serpa, Massauary, Rio Maues, Rio Tabajoz.
(x) Papilio cybele Cramer (1777! ist praeoccupiert durch P. cybele Fabricius (1775) und nach dem.Prioritatsgesetz als Bezeichnung der Unterart
zu verwerfen. Zum nomenklatorischen Typus der Unterart riickt die nichstalteste benannte Form der Art, H. fzebr7s, vor, wahrend H. cydele als
Zustandsform der Unterart /2ebr/s zu behandeln bleibt. Trotzdem nun hierfiir die Einfihrung eines neuen Namens begriindet ware, wird vorgezogen,
den Cramerschen Namen cyde/e, unter dem die Form allgemein bekannt ist, als Benennung der Zustandsform beizubehalten, weil die Prioritiitsregeln
beziiglich der Namen dieser Begriffe nur innerhalb des Unterartkreises als masgebend erachtet werden konnen.
FAM. NYMPHALIDZ@ 25
e. Heliconius melpomene thelxiope Hiibner.
Nerets festiva thelxiope, Hubner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 12, f. 1-4 (1806-19).
Migonttts thelxiope, Hubner, Verz. Schmett. p. 12 (1816).
Heliconia thelxiope, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 103 (1847).
Heliconius thelxiope, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 559 (1862).
Heliconius erato forma thelxiope. Moschler in Verh. Zool.-Bot. Ges. Wien, Vol. 32, p. 316 (1883).
Heliconius thelviope, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 78, t. 32 (1885).
Heliconius melpomene thelxiope, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 93; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 69 (1go0r).
Heliconia thelxiope, Ch. Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 8, f. 88, 89, t. 7, f. 83, 84 (trans. ad H. m. aglaope) (1902).
Heliconius melpomene thelxiope, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 117, f. 20 (1905).
Nord-Brasilien : Para, Manoas, Itaituba ?, Maues ?.
J. Heliconius melpomene thelxiopeia Staudinger.
Helicontus thelxiope ab. (var.) thelxiopeta, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 305 (1896).
Heliconius melpomene thelxiopeia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 94, Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 70 (1go0r).
Helicontus thelxiopeta, Ch. Oberthur, Et. Ent. Fasc. 21, t. 8, f. 87 (1902).
Heliconia thelxiopeia var., Ch. Oberthiir ibidem, t. 8, f. 86 (trans. ad form. aglaopeia); t. 8, f. go (trans. ad H. m.
icina) (1902).
Heliconia thelxiopeia-aglaopeia, Ch. Oberthiir, ibidem, t. 8, f. 85 (trans. ad from. aglaopeta) (1902).
Niederlandisch-, Franzésich-Guayana.
- Forma augusta Riffarth.
Heliconius melpomene var. augusta, Riffarth (Maassen MS.) in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 204; Gatt. Helicon.
Vol. 1, p. 22 (1900).
Helicontus melpomene augusta, Riftarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 93; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 69 (1901).
Heliconia thelxiope var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 8, f. 93-96 (1902).
Heliconius melpomene thelxiope forma augusta, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 119, f. 21 (1905).
Niederlandisch-, Franzisisch-Guayana.
- Forma aglaopeia Staudinger.
Heliconius thelxiope var. aglaopeta, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Vol. 9, p. 305 (1896).
Heliconius melpomene aglaopeta, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 93; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 69 (1901).
Heliconia thelxiope var., Ch. Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 7, f. 82; t.9, f. 97 (trans. ad H. m. tyche) (1902).
Heliconius judith, H. milesia, Massen M S.
Niederlandisch-, Franzdésisch-Guayana.
- Forma melanippe Riffarth.
Heliconius melpomene var. melanippe, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 204; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 22 (1900).
Heliconius melpomene melanippe, Riffarth, ibidem. Vol. 46, p. 90; ibidem, Vol. 2, p. 66 (1901).
Heliconia thelxiope-lucia var.. Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 5, f. 57, 58 (1902)
Niederlandisch-Guayana : Berg en Dal.
g. Heliconius melpomene bari Oberthiir.
Heliconia bart, Ch. Oberthiir, Et. Ent. Vol. 21, p. 23, t. 11, f. 129, 130 (1902).
Helicon:us melpomene bari, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 47, p. 165 (1993).
Franzosisch Guayana..
hk. Heliconius melpomene elevatus Noldner.
Heliconius elevatus, Noldner in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 5 (1901).
Heliconius melpomene elevatus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 120 (1905).
Heliconius melpomene aglaope, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 95 ; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 71 (1gor).
? Heliconia thelxiope var., Ch. Oberthur, Et. Ent. Fasc. 21, t. 11, f. 121 (1902).
Amazonas.
1, Heliconius melpomene aglaope Felder, — Taf. 2 Fig. 8, ©.
Heliconius aglaope, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 79 (1862).
Heliconius thelxiope var. aglaope, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 559 (1862).
Heliconius melpomene aglaope, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 95; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 71 (part.) (1901).
Heliconia thelxiope-aglaope var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 10, f. 113-115, 118; t. 11, f. 122, 123 (1902).
Nord-Marajo, Para?; Amazonas : Santarem, Manaos, Fonteboa, S. Paulo de Olivenca. Rio Negro, Peru,
Ecuador.
2 ORE LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
&. Forma rubra Stichel, nov. form. (1).
Heliconius aglaope var. incarnata - (2?) Helicontus vesta var. rubra, (Staudinger u.) Bang Haas, Lepid. Liste, n. 45,
Pp. 47 (nom. nud.) (19017).
Peru : Cuzco.
6. Forma mirabilis Riffarth.
Heliconius melpomene ab, mirabilis; Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 205; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 23 (1yoo).
Heliconius melpomene mirabilis, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 96; Gatt. Helicon, Vol. 2, p. 72 (1901).
Peru : Iurimaguas.
y- Forma unimaculata Hewitson.
Heliconia unimaculata, Hewitson, Equat. Lep. p. 10 (1869) ; Exot. Butt. Vol. 4, Helicon. t. 6, f. 19 (1871).
Heliconius melpomene unimaculata, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 96; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 72 (1901).
Heliconius radiatus, Plotz MS.
Ecuador?, Surinam.
Oo
7. Heliconius melpomene riffarthi Stichel, nov. subsp. (2). — Taf. 2, Fig. 8a, ©.
a. Forma rubescens Stichel, nov. form. (2).
Peru.
k. Heliconius melpomene vicinus Ménétriés.
Heliconia vicina, Ménétriés, Lép. Acad. Imp. St-Pétersb. Vol. 2, p. 114 (1857).
Heliconius thelxtope var. victuus, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 560 (1862).
Heliconius melpomene vicina, Riffarth in Berl. Ent Zeit. Vol. 46, p. 96; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 72 (1901)
Heliconia thelxiope var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t 8, f. 91 (1902).
Heliconia thelxtope-aglaope var., Ch. Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 10, f. 116 (1902).
Amazonas : Teffé, S. Paulo de Olivenca, Pebas.
%. Forma amor Staudinger.
Heliconius amor, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 78, t. 32 (1885).
Heliconius melpomene amor, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p.97; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 73 (1901).
Amazonas : Massauary.
6. Forma rufolimbata Butler.
Heliconius vufolimbatus, Butler in Cist. Ent. Vol. 1. p*169 (1873).
Heliconius melpomene rufolimbatus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 100; Gatt. Helic. Vol. 2, p. 76 1901).
Heliconia thelviope var., Ch. Oberthtir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 8, f. 92 (1902).
Amazonas : Rio Tabajoz.
1. Heliconius melpomene eulalia Riffarth.
Heliconius melpomene ab. eulalia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 204; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 22 (1900).
Heliconius melpomene eulalia, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p. 96; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 72 (1901).
Heliconia thelxiope-cybele var. Ch. Oberthur, Et. Ent. Fasc. 21, t. 6, f. 70, 72; f. 71 (trans. ad H. m. cybele); t. 6,
f. 73 (trans. ad. form. faustina) (1902).
Niederlandisch-, Franzésisch-Guayana.
m. Heliconius melpomene penelope Staudinger.
Hreliconius penelope, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris) Vol. 7, p. 67 (1894); Vol. 9, p. 303, t. 7, f. 1
(1896).
(1) A. melsomene aglaope forma xv6re. — Differt a forma principali signaturis partis basalis alarum anticarum, strigis omnibus alarum posticarum
coccineis pro lateritiis. — Durch auffalende tiefrote anstatt ziegelrote Farbung des Basalfeldes des Vorderfliigels und der Streifen des Hinterfliigels von
der Hauptform unterschieden; das Gelb der ultracellularen Fleckengruppe ist mitunter durch einen kleinen Steg lings der Subcostalis mit dem roten
Basalfelde des Vorderfliigels verbunden. — Mehrere Fxemplare typ. in coll. Riffarth, Berlin. — Cuzco.
(2) A. melpomene ri ffarthi.— Supra fuscus; alis anticis parte basali, fascia abbreviata postdiscali rubris; posticis striga basali transversa sereique
strigarum radiatarum rubris. — Eine Unterart von H. me/pomene, welche sich an aglaoge anschliesst, von dieser aber auffallig dadurch unterschieden ist,
dass die jenseits der Zelle des Vorderfliigels liegende verkiirzte Fleckenbinde rot wie das Wurzelfeld, anstatt gelb ist. Diese Binde ist auch beiderseits
tiefer gezackt, dagegen weniger scharf begrenzt, bei einem vorliegenden Exemplar bis zur hinteren Radialis verkiirzt, proximal leicht gelblich angeflogen
und auf der Unterseite ganz getriibt. Der rote Querstreif des Hinterfltigels etwas schmaler und kirzer als bei 7g/aofe, oder nur als schwacher, auf die
Halfte verkirzter rétlicher Wisch erhalten. — Vorderfligellinge 39-40 mm. Peru (Ucayali); 2 & coll. Riffarth, Berlin, dem diese bemerkenswerte neue
Subspecies in Anerkennung seiner Leistungen im Spezial-Studium der Heliconii freundschaftlichst gewidmet sei.
Die Subspecies bildet Uebergiinge zu H. ». tyche und zwar so, dass zwischen dem roten Wurzelfelde des Vorderfliigels und der roten
Fleckenbinde kraftige rote Bestiubung etwa in der Form des Discalfleckes von H. melpomene melpum. auttritt (forma rabescens). In diesem Falle ist die
subapicale Binde breiter und etwas langer als auf unserer Abbildung der Hauptform und besteht aus5 zwischen den Adern liegenden, lose zusammen-
hangenden Teilen. Der rote Querstreif des Hinterfligels ist zu einem kurzen, keilfomigen Basalwisch, der mit der Spitze nur eben in die Zelle hineinreicht,
verkleinert und die Strahlen sind sehr breit und kraftig. — 1 & coll. Riffarth, Peru (Chuchuras, 320 m.).
FAM. NYMPHALIDA:
is)
x
Heliconius melpomene penelope, Riftarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46. p.97; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 73 (1901).
Heliconia thelxiope-penelope, Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 9 f. 108 (1902).
Heliconia thelviope-penelope var. Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. ro f. 110 (1902).
Bolivia.
&%. Forma margarita Riffarth.
eliconius melpomene ab. margarita, Riftarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 205; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 23 (1900).
~ Heliconius melpomene margarita, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p.98; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 74 (1901).
Heliconra thelviope-penelope var., Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 10, f. 112 (1902).
Bolivia : Rio Juntas.
- Forma penelopeia Staudinger.
Heliconius melpomene ab. pelopeta, err. typ , Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris) Vol. 7, p. 67 (1894).
Heliconius melpomene ab. penelopeta, Staudinger, ibidem, Vol. 9, p. 303 (1896).
Heliconius melpomene penelopeia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 100; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 76 (1901).
Heliconia thelxiope-penelope, Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 9 f. 106 (1902).
Bolivia : Rio Juntas.
“wD
Y. Forma penelamanda Staudinger.
Heliconius fenelope ab. penelamanda, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 7, p. 67 (1894); Vol. 9,
t. 7, £. 3 (1896).
Heliconius melpomene penelamanda, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 100; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 76 (1901).
Heliconia thelxiope-penelamanda, Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 10, f. 111 (1902).
Bolivia : Rio Juntas.
6. Forma pluto Staudinger.
Heliconius penelope ab. pluto, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 303, t. 7 f. 4 (1896).
Heliconius melpemene pluto, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 99 ; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 75 (1901).
Bolivia : Rio Juntas.
». Heliconius melpomene timareta Hewitson.
Heliconia timareta, Hewitson in Trans. Ent. Soc. Lond. (3), Vol. 5, p. 563 (1867); Exot. Butt. Vol. 4, Helicon.
t. 6 f. 21 (1871).
Heliconius melpomene timareta, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 99; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 75 (1901).
Heliconia vesta-aphyodyre vay. Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, t. 9, f. 104 (trans. ad form. pluto) (1902).
Ecuador.
&%. Forma virgata Stichel.
Heliconius melpomene timareta al. virgata, Stichel in Ins. Bérse, Vol. 19, p. 355 (1902); Berl. Ent. Zeit. Vol. 48,
S. B. p. (14) (1903}.
Heliconius melpomene timareta, forma virgata, Stichel u. Riftarth in Tierreich Vol. 22, p. 126 f. 22 (1905).
Ecuador : Santa Inéz.
4. Forma contigua Weymer.
Heliconius contiguus, Weymer in Reiss u. Stiibel, Reis. Siid-Amer. Lep. p. 118, t. 2 f. 6 (1890).
Heliconius melpomene contiguus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 98; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 75 (1901).
Ecuador : Agoyan, Santa Inéz.
Y- Forma richardi Riffarth. — Taf. 2, Fig. 9, 3.
Heliconius timareta ab. richardi, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 73; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 19 (1900).
Heliconius melpomene richardt, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p. 97; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 73 (1901).
Ecuador : Santa Inéz.
o. Heliconius melpomene erebius Jiffarth.
Ficlicontus timareta ab. evebia, Ritfarth (Maassen M S.) in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 201; Gatt. Helicon. Vol. 1,
p- 19 (1900).
Heliconius melpomene erebia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 99; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 75 (1901).
Helicontus melpomene evebius, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 2, p. 127 (1905).
Franzoésisch-Guayana ? oder Ecuador?
6. Heliconius melpomene amandus Grose Smith u. Kirby.
Heliconius amandus, Grose Smith u. Kirby (Staudinger M S.), Rhop. Exot. Vol. 1, Helicon. t. 1 f. 3 (1892).
Heliconius melpomene amandus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 101; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 77 (1901).
Bolivia : Bueyes, Rio Juntas, Prov. Sara. Peru.
28 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
29. Heliconius amaryllis Felder.
Heliconius amaryllis, Stichel u. Riffarth in Tierreich Vol. 22, p. 128 (1905).
a. Heliconius amaryllis amaryllis Felder.
Heliconius amaryllis, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon. Vol. 6, p. 80 (1862).
Heliconius amaryllis, Hopffer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 40, p. 131 (? part.) (1879).
Heliconius amaryllis Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 102; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 78 (1901).
Nord- Brasilien : Rio negro. Peru.
b. Heliconius amaryllis euryades Riffarth. — Taf. 3, Fig. 10, 6.
Heliconius amaryllis var. euryades Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 205; Gatt. Helicon. Vol. 1. p. 23 (1900).
Helicontus amaryllis euryades; Riffarth, ibidem, Vol. 46, p. 102; Vol. 2, p. 79 (1901).
Helicontus euryades, Kaye in Trans. Ent. Soc. Lond. p. 167 (1904).
Venezuela, Trinidad, Colombia (?), Peru.
c. Heliconius amaryllis rosina Boisduval.
Heliconia rosina, Boisduval, Lép. Guatém., p. 79 (1870).
Heliconius rosina, Butler u. Druce in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 351 (1874).
Helicontus amaryllis vosina, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 103; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 79 (1901).
Heliconia amaryllis, Distant in Proc. Ent. Soc. Lond. p. xiv (1876).
Heliconius amaryllis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 7g t. 32 (1885).
Heliconius petiveranus, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 153 (1881).
Colombia, Panama, Costa Rica.
%. Forma euryas Boisduval.
Heliconia euryas, Boisduval, Lép. Guatém. p. 29 (1870).
Heliconius euryas, WWeymer in Reiss u. Stiibel, Reis. Siid-Amer. Lep. p. 97 (1890).
Heliconius amaryllis euryas, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 104; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 80 (1901).
Heliconius amaryllis rosina, forma euryas, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol, 22, p. 131 f. 23 (1905).
Heliconius melpomene, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 557 (part.) (1862).
? Heliconius melpomene, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 154 (1881).
Colombia, Venezuela, Guatemala.
30. Heliconius vulcanus Butler.
Heliconius vulcanus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 131 (1905).
a. Heliconius vulcanus vulcanus Butler.
Heliconia vulcanus, Butler in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 433, t. 25 f. 5 (1865).
Heliconius vulcanus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 104; Gatt. Helicon, Vol. 2, p. 80 (1901).
Colombia, Britisch-Guayana (?), Panama/(?).
b. Heliconius vulcanus cythera Hewitson.
Heliconia cythera, Hewitson, Equat. Lep. p. 9 (1869); Exot. Butt. Vol. 4, Helicon. t. 6 f. 17 (1871).
Heliconius vulcanus cythera, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 105; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 81 (1901).
Ecuador.
%. Forma modesta Riffarth.
Heliconius vulcanus ab. modesta, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 206; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 24 (1900).
Heliconius vulcanus modestus, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p. 105; Vol. 2, p. 81, 154 (1901).
Heliconius hypna, Plotz M. S., Icon. t. 277.
Ecuador : Paramba.
2. Forma concinna, nov. form. (1).
Ecuador : Balzapamba.
(t) A. vudeanus cythera forma concénna. — Ditfert a forma principali alis anticis maculis albis distinctis marginalibus; fascia discali rubra in
parte proximali non alba, sed flava; posticis maculis marginalibus albis perspicuis, vix crenatis. — Vorderfliigel mit deutlichen weissen Saumfleckchen am
Distalrande, die hinteren ziemlich breit, nach vorn zu kleiner und wischartig. Die distal von der Zelle verlaufende schmale rote Binde, welche bei der
Hauptform an der proximalen Seite, mindestens vorn, weiss angelegt ist. erscheint hier reichlich bis zur Halfte der Breite gelb und ist an beiden Seiten
ziemlich stark zerkliftet; sie endet kurz vor dem hinteren Medianast. — Hinterflugel mit weisser Saumbinde am Distalrande, die aus breiten, an den
Adern nur schmal getrennten und vorn sehr schwach eingekerbten, fast viereckigen Flecken zusammengesetzt ist. —1 Gj coll. H. Riffarth, Berlin. —
Ecuador (Balzapamba). ;
FAM. NYMPHALID/ 29
31. Heliconius batesi Rittarth.
Heliconius bates, Riftarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 207; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 25 (1900).
Heliconius batesi, Riffarth, ibidem, Vol. 46, p. 105; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 81 (1901).
Heliconius batesi, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p 133 (1905),
Ecuador, Peru.
32. Heliconius nanna Stichel.
Heliconius nanna, Stichel in Ent. Zeit. Guben, Vol. 12, p. 143; Ent. Nachr. Vol. 25, p. 28 (1899).
Heliconius nanna, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 106; Gatt. Helic. Vol. 2, p. 82 (1901).
Heliconius nanna, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 134 (1905).
Heliconius bidentatus, Staudinger (u. Bang-Haas) in Lep. Listen ab 1899 (nom. nud.).
Siid-Brasilien : Espirito Santo, Minas-Geraes.
33. Heliconius besckei \énétriés.
Heliconia bescket, Ménétriés, Cat. Acad. Imp. St.-Peétersb. Vol. 2, p. 114, t. 8 f. 3 (1857).
Helicontus besckei, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 79 (1885).
Heliconius bescket, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 106; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 82 (1901).
Heliconius besckei, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 135 (1905).
Heliconius epiphyllis, Plétz M.S., Icon. t. 273.
Siid-Brasilien : Espirito Santo, Santa Catharina.
Cohors IV. — ATTHIDIFORMES
Antennen schwarz, iibey 2/3 dey Fliigellinge. Palpen weiss, Endglied schwarz. Abdomen etwas tibey den Hunterfliigel
hinausyeichend. Obersette dey Fliigel schwarz mit gelben und weissen Zeichnungen.
34. Heliconius atthis Doubleday.
Heliconia atthis, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 102, t. 14 f. 3 (1847).
Heliconius atthis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 76 (1885).
Heliconius atthis, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 107; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 83 (1901).
Heliconius atthis, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 136, f. 24 (1905).
Heliconius bourciert, Plotz M. S., Icon. t. 268.
Ecuador.
Sectio Il. OPISORHYPARI
Unterseite des Vorderfliigels hinter der Zelle grau, meist zeichnungslos, in der Regel
matt mehlig oder sammet-, seltener seidenglanzend; in diesem Falle hinter
der Mediana ein schmaler, glanzlos und matt beschuppter Streif. Bei einzelnen
Ausnahmen sind folgende Merkmale entscheidend : Vorderes Feld des Hinter-
fliigels beim & dunkelgrau, haufig nur wenig heller als die Grundfarbe, so auch
beim 2; bis zur voderen Radialis mehlig oder sammetartig bestaéubt oder
schwach glanzend bis zur Subcostalis.
Cohors |. HECALESIFORMES
Antennen von dey Lange dey Vorderfliigelzelle, meist schwarzbraun, zuwetlen mit hellbrauner Keule, beim Q fast in
ganzer Linge lateral hellbyaun, proximal schwarz. Palpen weiss oder gelb, Spitze schwarz. Oberseite des Vorder-
Sliigels meist schwarz mit gelben oder weissen Flecken, die des Hinterfliigels vorwiegend votbyaun oder braun mit
schwarzen Binden und gelben Flecken; ahnlich gewissen Arten der Gattung Tithorea Doubl. Q mit braun-
bis dunkelevauem glanzendem Hintervandfeld auf dev Unterseite des Vorderfliigels, schmalem, matt beschupptem
30 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Streif hinter dey Mediana und dunkel- oder braun-grauem, etwas glinzendem Vordervandfeld dey Obersette des
Ainterfliigels.
35. Heliconius crispus Staudinger.
Heliconius crispus, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 76 (1885).
Feliconius crispus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 110; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 86 (1901).
Helicontus crispus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 138 (1905).
Colombia : Antioquia, Cauca.
36. Heliconius hecuba Hewitson.
Heliconia hecuba, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 2, Helicon. t. 4, f. 11 (1857).
Heliconius hecuba, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 170; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 87 (1901).
Heliconius hecuba, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 138 (1905).
Colombia.
. Heliconius choarinus Hewitson. — Taf. 3, Fig. Il, Q.
Heliconia choavina, Hewitson in Ent. monthly Mag. Vol. 9, p. 83 (1872); Exot. Butt. Vol. 5, Tithor. et Helicon,
bo
SI
t. 7, f. 24, 25 (1873).
Helicontus choarina, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 111; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 87 (1901).
Heliconius choarinus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22. p. 139 (1905).
Blanchardia dismorphia, Buchecker, Syst. Ent. Lep. t. 51 (1880 ?).
Ecuador : Baiza (1500 m.).
38. Heliconius cassandra Felder.
Teliconius cassandra, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Zeit. Vol. 6, p. 419 (1862); Reise Novara, Lep. Vol. 2 (2),
teva Tie Sh 4n( SOD).
Helicontus cassandya, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 112; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 88 (1901).
Heliconius cassandra, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol, 22, p. 140 (1905).
Colombia.
39. Heliconius hecalesia Hewitson.
Heliconius hecalesta, Stichel u. Riffarth in Vierreich, Vol. 22, p. 140 (1905).
a, Heliconius hecalesia hecalesia Hewitson.
Heliconia hecalesta, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 1, Helicon. t. 2, f. 6 (1853).
Heliconius hecalesia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 113; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 89 (1901).
Heliconius hecalesia hecalesia, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 141, f. 25 (1905).
Colombia : Cauca, Medellin, Manicore, Rio Magdalena.
+. Heliconius hecalesia formosus Bates.
Heliconius formosus, Bates in Ent. monthly Mag. Vol. 3, p. 87 (1866).
Heliconius formosus, Godman u. Salvin in Biol Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 148, t. 17, f. 7, 8 (1881).
Heliconius hecalesia formosus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 113; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 89 (1901).
Heliconius hecalesia, Bates in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 247 (1863).
Zentral-Amerika ; Guatemala, Nicaragua, Costa Rica, Panama.
c. Heliconius hecalesia gynaesius Hewitson.
Heliconius gynaesia, Hewitson in Ent.monthly Mag. Vol. 11, p. 182; Exot. Butt. Vol. 5, Helicon. t. 8, f. 28 (1875).
Helicontus hecalesia gynaesia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 114; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 91 (1901).
Heliconius hecalesia gynaesius, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 142 (1905).
Heimat unbekannt.
40. Heliconius octavia Bates.
Heliconius octavia, Bates in Ent. monthly Mag. Vol. 3, p. 86 (1866).
Heliconius octavia, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 148, t. 17 f. 9, 10 (1881).
Heliconius octavia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 114; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 176 (1901).
Heliconius octavia, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 143 (1905).
Zentral-Amerika : Guatemala, Honduras.
41. Heliconius longarenus [ewitson.
Aleliconia longarena, Hewitson in Ent. monthly Mag. Vol. 11, p. 182; Exot. Butt. Vol. 5, Helicon. t. 8 f. 39 (1875).
Heliconius longavena, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 115: Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 91 (1901).
Heliconius longarenus, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 143 (1905).
Colombia.
FAM. NYMPHALID/ 31
Cohors Il. AOEDEFORMES
Antennen hiivser als die Halfte des Fliigelvorderrandes, schwars oder braun nut hellbrauner Keule und ockergelbey
Spitze, beim Q distal reichlicher aufgehellt. Palpen an der Aussenseite weiss oder gelb, an dey Innenseite und
die Spitze schwarz. Oberseite der Fliigel schwarz oder schwars-braun ; Vorderfliigel mit gelben Flecken, proximal
vot; Hinterfliigel einfarbig, mit weisslichen Wischflecken am Saum oder mit roler Strahlenzeichnung. Abdomen
lateral mit runden Fleckchen.
42. Heliconius godmani Staudinger.
Heliconius godmani, Staudinger in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 397, t. 24 f. 3 (1882).
Heliconius godmani, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 116 (1901).
Heliconius godmani, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 145 (1905).
West-Colombia : Rio San Juan.
43. Heliconius metharme Erichson.
Heliconia metharme, Erichson in Schomburgk, Reis. Guiana, Vol. 3, p. 595 (1848).
Heliconius metharme, Riffarth, in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 117; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 93 (1901).
Heliconius metharme, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 145, f. 26 (1905).
Heliconia thetis, Boisduval, Lép. Guatém. p. 29 (1870).
Heliconius doris ab. thetis, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 316 (1896).
Heliconius methame, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 142 (1871).
Heliconius erato, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop. Vol. 1, p. 160 (1881).
Heliconius anaclia, Plotz M. S., Icon. t. 487.
hs
Nord-Brasilien : Ega, Fonteboa, Sao Paulo de Olivenga; Peru : Iquitos, Pebas; Colombia; Britisch-
Guayana; Nicaragua (?).
44. Heliconius aoede Hiibner.
Heliconius acode, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 146 (1905).
a. Heliconius aoede aoede Hiibner.
Wigonitts aoede, Hibner. Verz. Schmett. p. 12 n° 43 (1816); Zutr. exot. Schmett. Vol. 1, p. 23 (1818).
Heliconia aoede, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 103 (1847).
Heliconius aoede, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 118; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 94 (1901).
Nord-Brasilien : Para, Santarem, Itaituba, Massauary ; Franzésisch-Guayana.
6. Heliconius aoede astydamia Erichson.
Heliconia astydamia, Erichson in Schomburgk, Reis. Guiana, Vol. 3, p. 595 (1848).
Heliconius aoede var. astydamia, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 144 (1871).
Helicontus aoede astydamia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 118; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 94 (1901):
Heliconia emmelina, Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, p. 24 t. 11 f. 132 (1902).
Britisch-Guayana : Demerara; Nord-Brasilien, Amazonas : Obidos, Manaos, Manicore bis Sao Paulo
de Olivenga.
c. Heliconius aoede lucretius Weymer.
Heliconius lucretius, Wevmer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 51, p. 290 (1890).
Heliconius bartletti forma lucretius, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep, (Iris), Vol. 9, p. 307 (1896).
Heliconius aoede lucretius, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 2, p. 118; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 94 (1901).
Heliconius aoede lucretius, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 149, f. 27 (1905).
Nord-Brasilien : Thomar (Rio Negro), West-Amazonas ; Peru, Bolivia, Venezuela.
d. Heliconius aoede bartletti Druce. — Taf, 3, Fig. 12, 0.
Heliconius bartletti, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond. p. 219, t. 18, f. 2 (1876).
Heliconius aoede bartletti, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 119; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 95 (1901).
Heliconius vedius, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 78 (1885).
¢. Heliconius aoede cupidineus Stichel nov. subsp. (1).
Peru : Tarapoto, Juanjuy.
(1 H. voede cupidineus. — Differt a subsp. typ. alarum anticarum fascia abbreviata subapicali angustissima. — Vorderfligel mit stark
verachmalerter, nur 3-4 mm. breiter gelber Subapicalbinde, welche schriger gestreckt und an ihrem distalen Verlauf stumpfwinklig nach hinten abgestuft
ist. Rotgelbe Basalbestaubung etwas reichlicher, die Strahlen des Hinterfligels eine Wenigkeit breiter als bei 1. a. bartlettr; sonst wie diese. —
t,t Oi. coll. H. Riffarth, Berlin. — Peru : Tarapoto, Juanjuy.
32 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Cohors Ill. XKANTHOCLEDOFORMES
Antennen schwarz oder schwarzbraun, distal an dey Unterseite dev Keule braunlich, linger als die Zelle des Vorder-
Juiigels. Palpen schwarz, an dey Aussenseile etwas weiss. Oberseite dey Fliigel schwarz; Vorderftiigel mit votem
Wurzelfeld und gelber Fleckenbildung ; Hinterfliigel einfarbig oder mit voter Strahlenzeichnune. Abdomen
ventral gelb gefleckt, lateral mit gelben Fleckchen, die Segmenteinschuitte scharf gelb markiert.
45. Heliconius xanthocles Bates.
Heliconius xanthocles, Stichelu. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 150 (1905).
a. Heliconius xanthocles xanthocles Bates. — Taf. 3, Fig. 13, 3
Heliconius xanthocles, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p, 561 (1862).
Heliconius xanthocles, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 128; Gatt. Helicon. Vol. 2. p. 96 (1901).
Britisch-, Franzésisch-Guayana.
b. Heliconius xanthocles vala Staudinger.
Heliconius vala, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 78 (1885).
Heliconius paraplesius forma vala, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 306 (1896).
Helicontus xanthocles vala, Riffarthin Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 120; Gatt. Helicon. Vol. 1, p. 96 (1901).
Heliconius xanthocles vala, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 151, f. 28 (1905).
Heliconia caternaulti, Ch. Oberthiir, Et. Ent. Fasc. 21, p. 24, t. 11 f. 131 (1902).
Niederlandisch-, Franzésisch-Guayana.
c. Heliconius xanthocles paraplesius Bates.
Heliconius paraplesius, Bates in Trans. Ent. Soc. Lond. (3), Vol. 5, p. 540 (1867).
Heliconius xanthocles paraplesius, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 120; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 96 (1901).
Heliconius olede, Pl6tz M S., Icones, t. 301.
Nord-Brasilien : Para, Rio Maues, Itaituba, Cameta.
d. Heliconius xanthocles melete Felder.
Heliconius melete, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lepid. Vol. 2 (2), p. 376 (1865).
Heliconius melete, Hopffer in Ent. Zeit. Stett. Vol. 40, p. 432 (1879).
Heliconius xanthocles melete, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 121; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 97 (1901).
Heliconius hippocrene, Bang-Haas (Staudinger u.), Lepid. Liste no 48, p. 49 (nom. nud.) (1904).
Colombia, Bolivia, Peru.
e. Heliconius xanthocles melior Staudinger.
Heliconius melior, FH. bartletti var. ?, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 307 (1896).
Heliconius xanthocles melioy, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 122; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 98 (1901).
Peru, Ecuador. Bolivia.
7. Heliconius xanthocles melittus Staudinger.
Heliconius melittus, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 307 (1896).
Heliconius vanthocles melittus, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 21; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 97 (1901).
Peru, Bolivia.
Cohors IV. EGERIFORMES
Antennen schwarz, gegen das Ende ventral rotlich-braun, linger als die Zelle des Vorderfliigels. Palpen weiss, proxt-
maler Teil des Mittelgliedes, Spitze und die Innenseite schwarz. Vorderfliigel mit etwas ausgezogenem Apex.
Oberseite dey Fliigel schwarz, Vorderfliigel mit voter Wurzelbestiubung, im Discus, mitunter auch un Apex,
gelb gefleckt; Hinterfliigel mit voter Wurzelfirbung, die zu Spitzen, Zachen oder Strahlen ausgeflossen ist,
Vordervandfeld beam of dunkel braungrau, sammetartig glinzend.
46. Heliconius egeria Cramer.
Heliconius egeria, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 151 (1905).
a. Heliconius egeria egeria Cramer.
Papilio ezeria, Cramer, Pap. Exot. Vol. 1, p. 54, 152, t. 34 f. B.C. (1775-76).
Papilio egeria, Herbst | Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 4, p. 142 t. 74 f. 1 (1790)
FAM. NYMPHALID 33
Heliconius egerta, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 561 (1862)
Helicontus egeria, Rifiarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 123; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 99 (1901
Migonitis tsaea, Htibner, Verz. Schmett. p. 12 (1816).
Heltconia ergatis, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 207 (1819).
Niederlandisch-Guayana : Cameta. Oestliches-Amazonas. Rio Tabajoz.
+. Heliconius egeria egerides Staudinger.
Heliconius egeria var, egerides, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 311 (1896).
Heliconius egeria egerides, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 124; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 100 (1905)
Heliconius egeria egerides, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 155, f. 29 (1905)
Niederlandisch-Guayana :
: Bergen Dal. Amazonas : Manaos.
Nord-Ost-Brasilien : Massauary, Santarem, Itaituba.
d@. Heliconius egeria astraea Staudinger.
Helicontus egeria var. astraea, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 311 (1896).
Heliconius egeria astraea, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 125; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. ror (1901)
Brasilien ; Oberer Amazonenstrom (S. Paulo de Olivenga).
47. Heliconius burneyi Hiibner.
Heliconius burneyi, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 157 (1905).
a. Heliconius burneyi burneyi Hiilbner.
Migonitis burneyi, Hibner, Verz Schmett. p.12(nom.nud.)(1816); Zutr. Exot. Schmett. Vol. 3,p.7,f. 401, 402 (1825)
Heliconia burneyi, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 104 (1847).
Ifeliconius burneyi, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 126; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 102 (1901).
Heliconius burneyi burneyi, Stichel u. Riffarth in Tierreich. Vol. 22, p. 158 (1905).
Franzésisch-Guayana, Para, Amazonas, Bolivia.
b
. Heliconius burneyi huebneri Staudinger. — Taf. 3, Fig. 14.
Heliconius burneyt var. huebneri, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 312 (1896).
Heliconius burneyi huebneri, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 126; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 102 (1901).
Franzosisch-Guayana, West-Amazonas, Rio Negro, Bolivia, Peru.
. Heliconius burneyi catharinae Staudinger.
Heliconius catharvinae, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 79 (1885).
Helicontus burneyi catharinae, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 127; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 103 (1901).
Heliconius burneyi catharinae, Stichelu. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 159 f. 30 (1905).
Niederlandisch-, Franzés.-, Britisch-Guayana, Amazonas : Obidos, Massauary.
. Heliconius burneyi lindigii lelder.
Heliconius lindigti, C. u. R. Felder in Reise Novara, Vol. 2 (2). p. 377, t. 47 f. 1, 2 (1865).
Heliconius lindigit, Weymer in Reiss u. Stiibel, Reisen Sid. Amer. Lep., p. 27 (1890).
Heliconius burneyi lindigit, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 127; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 103 (1901).
Colombia.
Cohors V. DORIDIFORMES
Antennen schwarz, an dev Keule metst braunlich, nurv wemg langer als die Vorderfliigelzelle. Palpen schwarz, aussen
proximal und am Mittelglied wetss gefleckt. Oberseite dey Fliigel schwarz bis schwarzbvaun. Vorderfiiigel mit
oder ohne vote W urzelbestaubung,
mut discalen, haufig auch subaprcalen gelben Flecken; Hinterfliigel mat rotem,
blauem oder griinem Wurzelfelde und mehr oder weniger ausgepragter Strahlenzetchnung, selten einfarbig
schwarz, Vorderrandfeld beim cf dunkel braungrau mit schwachem Glanz.
45. Heliconius doris Linné.
Heliconius doris, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 161 (1905).
a. Heliconius doris doris Linné.
Papilio (Heliconius) doris, Linné, Mant. Plant. I1, p. 536 (1771)
34 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Papilio doris, Fabricius, Syst. Ent. p. 461 (1775).
Papilio doris, Cramer, Pap. Exot. Vol. 4, p. 92, t. 337 f. C (1781). (1).
Papilio doris, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 4, p. 155, t. 75 f. 3, 4 (1790).
Mechanitis doris, Fabricius, Syst. Gloss. M.S., Iliger in Mag. Ins, Vol. 6, p. 284 (1807).
Sicyonia doris, Hubner, Verz. Schmett. p. 13 (1816).
Heliconia doris, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool. Vol. 9, p. 204 (1819).
Laparus doris, Billberg, Enum. Insect. p. 77 (1820).
Heliconius doris, Blanchard in Hist. Nat. Ins. Vol. 3, p. 436 (3 non 2) (1840).
Heliconius doris, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 557 (1862).
Heliconius evato var. doris, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1. p. 77 (part.) (1885).
Heliconius erato doris (part.), Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46. p. 131; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 107 (1901).
Heliconius doris doris (part.), Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 162 (1905).
Papilio quirina, Cramer. Pap. Exot. Vol. 1, p. ror, 154, t. 65, f. A, B (1775-76).
Heliconius evato, Godman u, Salvin in Biol. Centr.-Amer. Lep. Rhop. Vol. 1, p. 160 (part.) (1881).
Helicontus doris caerulea, Staudinger (u. Bang-Haas), Lepid. Liste N° 32, p. 17 (nom. nud.) (1888).
Guayana; Venezuela(?); Nord-Brasilien : Para, Amazonas; Bolivia (?).
%. Forma amathusia Cramer.
Papilio amathusia, Cramer, Pap. Exot. Vol. 2, p. 124, 147, t. 177 f. F (1777):
Papilio amathusia, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 4, p. 149, t. 74 f. 4 (1790).
Helicontus evato ab. amathusia, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep..(Iris), Vol. 9, p. 316 (1896).
Heliconius evato amathusia, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 130; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 106 (1901).
Migonitis crenis, Hubner, Verz. Schmett. p 12 n. 51 (part.) (1816).
Heliconius evato, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 557 (1862).
Heliconius erato, Hopffer in Ent. Zeit. Stettin, Vol. 40, p. 433 (1879).
Heliconius erato, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Lep. Rhop. Vol. 1, p. 160 (1881).
Guayana, Ecuador.
2. Forma delila Hubner.
Nereis festiva delila, Hibner, Exot. Schmett. Vol. 1, t. 13 f. 1-4 (1806-19).
Higonitis delila, Hibner, Verz. Schmett. p. 12 n. 51 (1816).
Heliconius doris var. delila, Moschler in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 313 (1877).
Heliconius doris forma delila, Aurivillius in Sv. Akad. Hand. (2), Vol. 19, p. 48 (part.) (1882).
Heliconius doris delila, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 47, p. 152 (1902).
Heliconius doris doris forma delila, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 164, f 31 (1905).
Papilio evato, Clerck (non Linné 1758), Icon. Ins. Vol. 2, t. 40 f. 1 (1764).
Papilio evato, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett. Vol. 4, p. 138, t 73 f. 5 (1790).
Heliconia evato, Godart (Latreille u.) in Enc. méth. Zool, Vol. 9, p. 205 (1819).
Heliconia erato, Chenu u. Lucas in Encycl. Papill. p. 68, t. 23 f. 1 (1853).
Heliconius evato forma rubra, Bates in Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 557 (1862).
Heliconius doris var. erato, Butler, Cat. diurn. Lep Fab. p. 121 n. 7 (1869).
Heliconius evato, Godman u. Salvin in Biol, Centr.-Amer. Lep. Rhop. Vol. 1, p. 160 (part.) (188r).
Heliconius evato, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 77 (1885).
Heliconius erate, Riffarth in Berl. Ent. Zeit Vol. 46, p. 129; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 105 (1901).
? Papilio vicini 2, Linné (non Linné 1758!), Mus. Lud. Ulr p. 227 (1764).
? Papilio vicini S, Fabricius, Syst. Ent. p. 461 n. 81 (1775).
Heliconius doris 2, Blanchard in Hist. Nat. Ins. Vol. 3, p. 436 (1840).
Heliconius evato var. mars, Staudinger (u. Scha/z), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 79, t. 32 (1885).
Heliconius doris rubra, Staudinger (u. Bang-Haas), Lepid. Liste No 32 (nom. nud.) (1888).
Guayana; Brasilien : Amazonas; Peru; Bolivia; Ecuador.
+. Forma tecta Riffarth.
Heliconius evato ab. tecta, Riffarth (Maassen M.S.) in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 207; Gatt. Helicon. Vol. 1,
p. 25 (1900).
Heliconius evato tecta, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 132; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 108 (1gor).
Peru, Colombia.
6. Forma metharmina Staudinger.
Heliconius erato ab, metharmina, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Vol. 9, Lep. (Iris) p. 315 (1896).
ix) Cramer bildet hier die Form mit weissem anstatt gelbem Vorderfliigelfleck, wie sie tatsichlich auch vorkommt,ab.In der Sammlung des Herrn
Ch. Oberthiir, Rennes, befinden sich, nach freundlicher Mitteilung desselben, aussser dieser auch noch die Forma amathwsia und Forma de/éla mit
weissgeflecktem Vorderfliigel, simtlich aus Franzésisch-Guayana.
FAM. NYMPHALID2® 35
Heliconius evato metharmina, Riftarth, in Berl, Ent. Zeit. Vol. 46, p. 132; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 108 (1901).
Helicontus doris-nigra, Staudinger (u. Bang-Haas), Lepidopt. Liste N° 33, p. 17 (nom. nud.) (1889).
Amazonas, Peru, Bolivia, Ecuador, Venezuela, Colombia.
». Heliconius doris caeruleatus Stichel nov. subsp. (1).
Heliconius erato var, doris, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 77 (part) (1885).
Heliconius erato var. doris, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 315, 317 (part.) (1896).
Heliconius erato var. doris, Weymer in Reiss u. Stiibel, Reisen Siid-Amer. Lep. p. 78 (1890).
Heliconius dorts doris, forma principalis, Stichel u. Riffarth in Tierreich, Vol. 22, p. 163 (part.) (1905).
Siid- Peru. Bolivia (?).
ce. Heliconius doris aristomache Riffarth.
Heliconius doris arvistomache, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 131; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 107 (1901).
Heliconius erato var. doris, WWeymer in Reiss u, Stiibel, Reisen Stid-Amer. Lep. p. 12 (1890).
Ecuador, Colombia, Costa Rica.
d. Heliconius doris viridis Staudinger.
Heliconius doris viridis, Staudinger (u. Bang-Haas), Lepid. Liste, ne 33, p. 17 (nom. nud.) (1889).
Helicontus erato var. viridis, Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 77 (part.), t. 32 (1885).
Heliconius evato var. et ab. viridis, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p.213, 317 (part.) (1896).
Heliconius erato viridis, Riffarth in Berl. Ent. Zeit. Vol. 46, p. 132; Gatt. Helicon. Vol. 2, p. 108 (1901).
Helicontus erato, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Lep. Rhop. Vol. 1, p. 160 (188r).
Honduras, Panama, Venezuela, Colombia (?).
%. Forma viridana Stichel nov. form. (2).
Colombia.
t) H. doris ca-ruleatus. — Alis anticis ut in subsp. typ.. posticis radiis furcatis caeruleis elongatis, cam punctis albidis submarginalibus plus
minusve cohaerentibus. — Diese, anscheinend in Peru lokalisierte, Subspecies unterscheidet sich von der typischen Unterart dadurch, dass die kurzen,
blauen, gabelformig gespaltenen Strahien des Hinterfliigels wesentlich verlangert sind und mit den weisslichen Punkten am Distalrande mindestens im
hinteren, haufig aber auch im mittleren Fligelfelde zusammenhingen. Die Unterart scheint, wie auch H. a. aréstomache in Ecuador, ausschliesslich in
der blauen Form yorzukommen; sie unterscheidet sich von jener, abgesehen von den meist liingeren Strahlen des Hinterfliigels, auch dadurch, dass
die gelben Discalflecke des Vorderfligels nicht verkleinert. sondern voll ausgebildet sind wie bei der typischen Unterart. Im Gebiet des oberen
Amazonenstromes scheint eine Vermischung aller drei Formen einzutreten. — 2 G als Typ. aus zahlreichen Individuen von Siid-Peru (Pozuzo) i. coll.
Stichel.
(2) H. doris viridis forma viridana. — Alarum posticarum radiis furcatis viridibus saturatioribus, multo brevioribus quam in form. principali-
— In der Zeichnung des Vorderflugels gleicht diese Form der columbischen Hauptform und den zentralamerikanischen Vertretern der Art. Die
Fleckbildung im Discus ist reduziert und namentlich im vorderen Veile verkiimmert und unterbrochen; dagegen sind die gabelformigen, gesattigt griinen
Strahlen des Hinterflagels stark verkiirzt und gleichen in der Form etwa der Zeichnung bei H. doris doris aus Guayana. — Typ. i. c. Stichel. Colombia,
Rio Magdalena sup.
Diese griine Form scheint fiir Mittel- und Siid- Columbien charakteristisch zu sein; da sich aber eine natiirliche Grenze ihres Fluggebietes
nach Norden nicht sicher festsetzen asst, wird vorgezogen, diese sowie die neben ihr fliegende rote Form (evatonéa) nicht als Vertreter einer besonderen
Subspecies zu behandeln, sondern von der Altest benannten, hauptsichlich fiir Panama charakteristischen H. dorés viréd/s abzuleiten, zumal bei einer
Abtrennung der columbischen Vertreter der Art als nomenklatorischer Typus aus Prioritatsriicksichten eine zufallige Aberration (vdscz72s Weym., 1890)
gewahit werden misste. Neben erwaihnten 3 Formen erscheint in Columbien noch eine blaue dor/s, die in ihren Charakteren iiberwiegend zu /. doris
aristomache 20s Ecuador neigt, und deren Fluggebiet debnt sich wiederum bis Costa Rica aus, Andererseits erscheint in Mexico und Honduras eine rote
Form. H. @. transiens, die in Minderheit neben forma eratonéa auch in Columbien angetroffen wird. Es ist daher schwer, eine sachgemiasse Hinteilung
der betreffenden Formen in Unterarten und Abarten (Zustandsformen) vorzunehmen und mag die hier gewablte Gruppierung nicht einwandfrei sein.
Immerhin musste eine solche, unter Beobachtung méylichst einheitlicher Grundsitze zur Erzielung einer befriedigenden Ubersicht iiber das bekannte
und benannte Material nicht unversucht bleiben. Massgebend war dabei die vorzugsweise Conzentration der verschiedenen, nach ihren wesentlichen
Merkmalen getrennten Formenreihen auf bestimmte Gebiete. Die Doris-Formen kénnen folgendermassen leicht analytisch behandelt werden :
1. Worderflugel mit Discalfleck . Cintra Noemie 1 (Cunt One Nie tink wth bie I ntialeel eo
Vorderflugel ohne Discalfleck 6 4 Fs Can rowy 7a to tc 5 o 6 6 6 6 8 oO 0 0 AOU CEs
Discalfleck des Vorderfliigels rein gelb, catfecivans in aes intered Hiailfte.
b
- . . . . J.
Discalfieck des Vorderfligels schwarzlich iiberstaubt . Forma ¢ecta.
3. Discalfieck des Vorderfliigels voll entwickelt. 4.
Discalfleck des Vorderfligels im vorderen Teil a6 6 4 os
gordius, Heliconius numatus (zwmata)
gracilis, Eueides aliphera . . .. .
foradatussEleliconius seer) ee en
egradatus, Heliconius gradatus. . . . .
Suara, WIM 5 5 6 6 & 4 6 5
guavica, Heliconiushydava. . . . .. .
guaricus, Heliconius hydarus. .
guayana, Heliconius, . . .
guiensis, Heliconius zumata (ab.) .
guiensis, Heliconius numatus numatus .
gustavi, Heliconius cydno. .
gustavi, Heliconius weymeri forma
gynaesta, Heliconia (Heliconius). . . . .
gynaesius, Heliconius hecalesia
haenschi, Heliconius cydno (ab.) .
haenschi, Heliconius cydno alithea forma
WiKi, Aigo 5 5 5 65 6
inalovnvabhh, Iskatbicovings, 3 95 6 6 5 4
hahneli, Heliconius cydno
hecale, Heliconius (Ajantis Heliconia, Papilio, .
rengiosig., iebtigomtms 5 5 9 5 5 6 6 «
hecalesia, Heliconius(Heliconia) . .
hecalesia, Heliconius hecalesia. . . .
hecuba, Heliconius (Heliconta). . . . .
heliconioides, Eueides. . . . - .
heliconioides, Eueides heliconioides . . .
heliconioides var. 8; ISMSGES*s Goun) So -e0 5
heraldicus, Eveides thales . . . . .
hermanni, Heliconius ismenius (ab., var.) .
hermathena, Heliconius (Heliconia) . . .
hecmogenes iHelico7i@h es es)
hermogenes, Heliconiuscydno. . . . .
heurippa, Heliconia {Heliconius) . . . .
hewitsoni, Heliconius (Heliconia)
hierax, Heliconius (Heliconia) . . .
himera, Heliconius (Heliconia
hippocrene, Heliconius. . . .
InrpyOlel, EIAs, 5 5 5 5 65 «
hippola, Heliconius hippola. . . -
lanpyoolienas, INOS 5 56 5 6 5 6 5 6
hippolinus, Eueides isabella.
. 60,
hippolyte, Heliconiusmelpomene. . . . . .
hippolyte, Heliconius melpomene tycheforma. . .
holcophora, Heliconius anderida semiphorus forma.
holcophorus: Heliconius|clava yn) eee en ee
holcophorus, Heliconius semiphorusab. . . .
hortensey Hieliconius) (2112607272) en
hortensia, Heliconia (Heliconius). . . . . ...
huebneri, Heliconius burneyi(var.) . . . .. .
Intra, IUCN 6 <5 5h 0 0 e1o 5 o © @ o
hiibnertueideshsabellay sesame
hyjastyELellCOmiUS Samira et er
yas, ISIS MNS GsHe, 5 5 50 5 b 5 6 oc
hydava, Heliconia(Heliconius) . . .... .
hydarus, Heliconius . . Sh RE oie al ae bis
hydarus) Heliconimusihydarus) 20s je) aa ine
hygiana, Heliconta(Heliconius). . . .... .
hygiana, Heliconius clysonymus (clysonimus) . . .
[RyNog, sIONGoINS, 565 6 6 o 2 eo 3 8 6
hy pscpylex@En ed CS marae ie ieee nee ae
ieiliions Jsielbyeornling GG bg Ye SG oho 6 a 8
idalionswrHelicontuspanistlonal llr annie
illustvis@rleliconiusmiyushuaye es asia enters
immoderata, Heliconius ismenius ismenius forma
iucarnata, Heliconius aglaope var. . . . . .
infuscata, Heliconius eucrate var. . . . . 2s
interyvupta, Heliconius . . .
isabella, Eueides (Epimetes, Heliconia, Papilio). . .
Haat NOW 6 pl eg) 6 6 soo Bye, Hey si c6
isabellayeeueidestisabellasy: ey yeu ren sheen nce
DSCLUELIGE MES E1G CS Sanne
isabellinus. Heliconius aurora vay. . . . .
isabellinus, Heliconius nuwmata var. . . . er
isabellinus, Heliconiusnumatus . . .. .
tsaea, Migonitis o 8
USIIUCNLE CM ELELUCOTLC Cat =o wn
ISMeENIUS Eel CON1US ayy yee n=
ismenius, Heliconius ismenius .
dees IIb: 6 5 & Vs 5 6 6 8 *
ithaka, Heliconius ithaka. . Py eee Soin
jonas, Heliconius . .. . ne eS eee Pee
ONE, ISCO MINS OMe 5 6 o 0 0 4 2 9 9
jonas, Heliconius quitalenus sisyphus forma
jucunda, Heliconius anderida zuleika forma
jucundus, Heliconiusclara. . . . . . 5 5
jucundus, Heliconius zuleika var... . .
udith, Heliconius . . rs dS Me ee b
juno, Heliconius cyrbia(var.). .. .. .
jiaitanag Ele liconis eucoaa enn ae en ee
juntanus, Heliconiusethilla. . . . . .
pussc@ E1el1COm1S salience Scare
tustind, Heliconius. . . a
o Oo 0
FAM. NYMPHALIDA®
karschi, Heliconius melpomene (ab.). . . . . .
karschi, Heliconius melpomene melpomene forma.
PunowerFueides. 2. 5 = 2 =
JampetemEueides sae) Bro ete
lampeto, Eueideslampeto. . . .
lativitta, Heliconius ee ney
lativmitiasiieliconiusierato; 5 5 5 co 3 «la = <
lativitta, Heliconius phyllts
latus, Heliconius paraensis .
latus, Heliconius paraensis var. . .
leda, Heliconius erato erato forma. . . atts be
leda, Heliconius piyilis
leda, Heliconius vwesta ab. mL tes
Jenaeus;Heliconius: (7 995 2). 3 =
lenaeus, Heliconiusaristiona . .......
leopardusHeliconius., 5 5 2 5
leopardus, Heliconius novatus. . . . .
leopardus, Heliconius novatus novatus forma. .
leucadia, Heliconius . .
leucadia, Heliconius leucadia
leuce, Heliconta(Heliconius). . .... .
leuce, Heliconius sapho (sappho) . . . . .
leucomma, Eueides oS mk” Aaleea ine tp, ae ee
libitina,Euerdes?, 20 5 Sse ek a
libitina, Eueidesilineatus: ©...) . 2 8 oS on
iGtra IS Ct@omke (es 2 se ee Beh bop
lindigii, Heliconiusburneyi. . . . . .
PREP ENCIGCS oom S812 ee ee ee ef
lineatus; Eueides) . . 3 42 2 Se 4
lineatus, Eueides lineatus
locurs, Wielicomius» 2 =) 5: ts: Sie ie is
WEBDOREN MS ELEICONIA = od Sami re Ss 47 rufolimbatus, Heliconiusmelpomene . . . . . . 26
Rieke BeCHGONIUS rae e ag Se 22
Pirga BE were se Pee Mae es Oh rs a hes 10 Sallam, InielhleomltiS, 6s 6 9 5 6 8 « 6 6 4 39
pling, ISWAGES GS Pa, 5 bo cs a ob 6 6 8 61 SalviniiyEfeliconils anti OChusirairm (cil ineiine 39
pluto, Eueides eaneseanidesforma . ... . . 61 sanguinea, Heliconius erato anactorie forma. . . 47
pluto, Eueides eanes felderi ab. . . . . . . . 61 sanguineus, Heliconius anactorie ab. . . .. . 47
pluto, Heliconiusmelpomene . . . .... . 27 sanguinews, Heliconius piyllis: 2 5 . . 2. =. . . 47
pluto, Heliconius melpomene penelope forma. . . 27 sapho, Heliconius (Heliconia, Papilio). . . . . .37, 38
Rochrnus. Helicomius) 3 Ss 2 se eS sh 22 SEIN, ISIAiicomiMNsS SN) 5 4 5 o 2 6 5 4 0 38
polychxoussielcomluss. fos bent aaa, & 9 sappho, Heliconius (Ajantis, Heliconta, Papilio). . . 38
polychrous, Heliconius narcaea(var.) . . . . . 9 sara, Heliconius(Laparus, Papilio). . . . . . . 40
praelautus, Heliconiusnumatus . . .... . sf) SAT, JERROD (SUWBIO)) «56 8 9 0 6 0 oe 0 Sy LO
pretiosa, Heliconius aristiona staudingeri forma. . 17 cena, IGN@omINS SHEE. 5 6 5 5 6 5 5» o 6 6 6 40
pretiosus, Heliconius staudingeri (var.) . . . . . 17 sara, Heliconius sara : & ig 41
pPREMvlaris PEicliconluS see ye ee ie Sn Ss 38 Sa, INCHES GEM s > oS 6. oa a Wo 8 1 o Deh oO)
primularis, Heliconius sapho (sappho) . . . . . 38 QAE UE fo ISIQITIODNG? 5 0 be 16 8 oe 6) 2 37
procula.Pueides: Sib. te Se ee 58 Sins, WIGIiGoOMNMS » » os 6 © 5b 6 © o 6 0 9
pseudamaryllis, Heliconius amaryllis var. . . . 42 Satis; Feliconius mancaeal (Vary ee) een 9
BsendorneasHelconius se sie, 5s 39 Selmi, OMENS, 5 5 56 2 o o 6 & ¢ : 14
pseudorhea, Heliconiusleucadia . ei erie 39 Soil, moc ically 5 5 o 5 «o o co o 6 0 Be)
pythasorasbueides: eee ee eS 60 semiflavida. Heliconius ethilla mentor forma. . . 13
pythagoras. Eueidestales. . . . . re cea 60 semiflavidus, Heliconius euwcoma . . . . . . . . 13
semiflavidus, Heliconius metalilis var. . . . . . 13
quirina, Papilio . .. . Sug Gt Saline SMS 34 semiphorus, Heliconiusanderida . . . . .. . 19
quitalena, Heliconta(Heliconius). . .... . 18 Semiphorus) Heliconius clava §-l ee) eee 19
qguitalenus; Heliconms:, 2 5 = 5 6 = 20s. 18 semiphorus, Heliconius metaphorus var... . . . . 19
quitalenus, Heliconius quitalenus. . . . ... 18 SOCOM, IFIGGOMMNS, so s)5 5 o 5 o°o © 16
: SENEHO ON, INISMCO MMS ARISVOME, 56 5 6 5 6 6 6 16
RU aSMCHCONIMS La wen Bee en es sk a) oe 26 seraphion, Heliconius aristiona aurora forma. . . 16
FAdiosuSLeElicOMIUSH) =) Poss fg Sk cl ee 17 SSS, IIo 6 5 5. 5 0 6 : Popes 18
radiosus, Heliconius pardalinus . ..... . 17 BAB. IGWIOMWS 2 5 6 5 « @ 0 9 0 5s oe 16
rhea, Heliconius (Papilio). 2 sO, GT silvana, Heliconius(Heliconia, Papilio) . . . . . II
RC CMELCHCOMIUS SALAD ESC i fs) is vee dae 40 Svea), ighCormmns Gia | =o 6 5c o 5 @ 6 6 II
richardi, Heliconius melpomene Ee Loeeck We 27 simplex, Heliconius eratoestrellaforma . .. . 46
richardi, Heliconius melpomene timareta forma . . 27 Sisijolmee, HIGhGomNS 2 6) ¢ 9 0 6 0 6 0 5 0 18
richardi, Heliconius timareta ab. 27 sisyphus, Heliconius quitalenus (quitalena). . . . 18
ricini, Eueides (Apostraphia, Heliconia, Heliconius, Rowse, HIGhcomimiS . 2 o no 5 o 6 4.0 5 50
UDELL Ys Baer en rr pene Ghia rans vee ue 56 sotericus, Heliconius telesiphe(var.). . . . . . 50
FICUIP EAP tires at Ose (sieece en i ek en fee ees 34 SHEETS. WEIGNCOMWNINS, 5 6 5 5 6 bp o a 8 14
tiffarthi. Eueides eanes (.1b.). ie es 61 splendida, Heliconius aristiona aristiona forma . . 15
riffarthi, Heliconiusmelpomene . ..... . 26 splendidus, Heliconius aristiona (var.). . . . . . 15
robigus, Heliconius (Heliconias) . . . ... . II spoliata Eueides isabella htitbneri forma (ab.). . . 55
robigus, Heliconiussilvana. . . . Seles II Spree, IBIGMGOmmNS, 2 o 6 o 4 6 b o 6 6 6 40
rosina, Heliconia(Heliconius) . ...... . 28 Sprite, Inicio Che) 6 5 5 6 5 6 6 6 0 40
tosina, Heliconiusamaryllis. . . . ..... 28 spurius, Heliconius. RSA NE sh eDoeeoer eb are te 18
roxane, Papilio . tac 47 spurius, Heliconiusfortunatus. . . .... . 18
Us TICe IGE 2g ee ye de oe eg 22 Sayudiinyaern, IRIeMbeomis 5 5 6 2 6 6 6 6 6 6 17
tubescens, Heliconius melpomene riffarthi forma. . 26 staudingeri, Heliconius aristiona . at, Aap e Meee 17
yubya, Heliconius doris (evatoforma) . . ... . 34 Faieh, BiGhcommmseyelwo, « 2 o «¢ p 4 0 6 oc 22
rubra, Heliconius melpomeneaglaopeforma . . . 26 stiibeli, Heliconius cydnogalanthusforma. . . . 22
TD LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
subcydnides, Heliconius cydno (var.)
subcydnides, Heliconius cydno cydnides forma .
subnubilus, Heliconius novatus
sulphurea, Helicontus clytia var.
sulphureus, Heliconius
superioris, Heliconius .
supertoryts, Heliconius
superioris, Heliconius numatus (7«mata)
surdus, Eueides tales (thales) .
sylvana, Helionia (Heliconius)
tales, Eueides (Papilio)
tales, Eueides tales .
tamarinda, Heliconius .
tarapotensis, Heliconius aristiona .
tecta, Heliconius doris doris forma
tecta, Heliconius erato (ab.) .
telchinia, Heliconia (Heliconius) .
telchinia, Heliconius ismenius .
telesiphe, Heliconius (Heliconia)
telesiphe, Heliconius telesiphe .
tellus, Heliconia vesta
tellus, Heliconius erato
tellus, Heliconius erato erato forma
temerinda, Heliconia
temerinda, Heliconius cydno
teymerinda, Heliconius cydno
thales, Eueides (Heliconia, Papilio)
thales, Nereis festiva .
thales var., Eueides .
thalestris, Heliconia
thamar, Heliconius (Svcyonia)
thamar, Heliconius sara .
thamar, Nereis caerulea. . .
thelxiope, Heliconius (Heliconia, Migonitis).
thelxiope, Heliconius melpomene .
thelxiope, Nereis festiva
thelxiope-aglaope var., Heliconia
thelxiope-cybele var , Heliconia.
thelviope-lucia var., Heliconia .
thelviope-melpomence var., Heliconia .
thelxiope-penelamanda, Heliconia. . .
thelviope-penelope (var.) Heliconia.
thelxiope var., Heliconius (Heliconia)
thelviope-venustus var., Heliconia .
thelxiopeia, Heliconia .
thelxiopeia, Heliconius melpomene
thelxiopeia, Heliconius ¢helwiope ab. (var.)
thelxiopeia var.. Heliconia
thelxiopeia-aglaopeta, Heliconia
thetis, Heliconia
thetis, Helicnnius doris ab. . . .
theudela, Heliconia (Heliconius) .
Seite.
nN
On
Seite.
theudela, Heliconius sara. . 41
thielei, Heliconius gradatus (var ) . : . 13
thyana, Eueides . . Seat. & 9 oo 59
timaeus, Heliconius 9 15
timaeus, Heliconius aristiona 0 15
timareta, Heliconta . 27,
timareta, Heliconius melpomene . 27
tithoreides, Heliconius. . . : 17
tithoreides, Heliconius pardalinus. 0 17
tleson, Heliconius . . aL ie es 16
transiens, Heliconius doris ; : 36
transiens, Heliconius evato(var.) . . Boi, Nene 36
tristis, Heliconius petiverana (ab.) . aot 43
tristis, Heliconius petiveranus demophoon forma . 43
tyche, Heliconius melpomene (var. ) 24
tyndarusssHeliconius) 9.) ene - 12
tyndarus, Heliconius ethilla: Lie 12
tyndarus, Heliconius ewcoma. a)
udalrica, Heliconius (Papilio) z a WA
udalrica, Heliconius andremona var. - 44
udalrica, Heliconius erato erato forma : 44
udalrica, Heliconius melpomene var. ato 44
udalrica, Heliconius phyllis oe of ig 44
uldalrica var., Heliconia vesta . 44
ulrica, Mivonitis 0 44
unifasciatus, Eueides . . . . 58
unifasciatus, Eueides vibilia. . . . 58
unimaculata, Heliconia, 4 : 26
unimaculata, Heliconius melpomene . - ont 26
unimaculata, Heliconius melpomene aglaope forma. 26
urania, Heliconius (Papilio) Botte. as
vala, Heliconius . 5 32
vala, Heliconius paraplesius forma 0 Ne 32
vala, Heliconius xanthocles . , 32
ages. Jslahicormvtls 5 5 § 5 6 «6 EO) Goer 31
vegetissima, Eueides isabella pellucida ab. os 55
vegetissima, Eueides isabella pellucidus forma . . 55
Weis, lssheomns 5 5 » 4 a oo ea 42
venus, Heliconius cyrbia. . ° 42
venusta, Heliconius erato anactorie forma . 47
venustus, Heliconius. . . . 47
venustus, Heliconius phyllis . . . Leet Pot ike 47
veraepacis, Heliconius . 41
veraepacis, Heliconius rvea var. Fi 41
veraepacis, Heliconius sara. . : 41
versicolor, Heliconius. | . . . gos Bets 18
versicolor, Heliconius quitalenus (quitalena) 18
vesta, Heliconius (Heliconia, Papilio) 44
vesta, Heliconius phyllis Nee 4 44
vesta, Nereis festiva Sei nese co 45
vesta-amazona (var.), Heliconta - 44, 45
vesta-andremona var., Heliconia
vesta-aphrodyte (var.), Heliconia
vesta-callycopis (var.), Heliconia
vesta-erythraca var., Heltconia.
vesta-estrella var., Heliconia
vesta-leda, Heliconia .
vesta-melpomene, Heliconia .
vesta-uldarica var., Heliconia
vesta-venustus, Heliconta
vestalis, Heliconius vesta var. .
vetustus, Heliconius
vetustus, Heliconius vetustus
vialis, Eueides vibilia .
vibilia, Eueides (Acraea, Cethosta, Colaents, Semelia)
vibilia, Eueides . .
vibilia, Eueides vibilia
vicina, Heliconia .
vicina, Heliconius melpomene
vicinalis, Eueides vibilia .
vicinus, Heliconius melpomene.
vicinus, Heliconius thelxiopevar . .
wiculatawieliconiusi <) is ss aie)
viculata, Heliconius callycopis forma . .
viculata, Heliconius erato callycopis forma
viculata, Heliconius phyllis(var.) . . . .
virgata, Heliconius melpomene timareta forma (ab.).
viridana, Heliconius doris viridisforma. . .
viridis, Heliconius doris .
viridis, Heliconius erato (ab., var.
vittatus, Heliconius
vittatus, Heliconius ithaka
vulcanus, Heliconius
vulcanus, Heliconius vulcanus .
vulpiformis, Bueides - . - = - .=.- .
FAM. NYMPHALIDA®
Seite.
vulgiformis, Eueides edias
wallacei, Heliconius
wallacei, Heliconius clytia (var.)
wallacei, Heliconius wallacei .
weymeri, Heliconius
weymeri, Heliconius cydno. .
xanthica, Heliconius anderida zuleika forma
wanthicus, Heliconius .
xanthicus, Heliconius clara
xanthicus, Heliconius jucundus var.
xanthicus, Heliconius zuleika var.
xanthoceras, Heliconia
xanthocles, Heliconius
xanthocles, Heliconius xanthocles. 5
xenoclea, Heliconius (Heliconia)
xenoclea, Heliconius xenoclea .
xenophanes, Eueides 5 9
xenophanes, Eueides heliconioides (ab.).
sagoya, Heliconius
zelinde, Heliconius
zelinde, Heliconius cydno
zobeide, Heliconius
zobeide, Heliconius antiochus
zorcaon, Eueides
zorcaon, Eueides cleobaea (var.)
zudetka, Heliconia
zuleika, Heliconius (Heliconia) .
zuleika, Heliconius .
zuleika, Heliconius anderida
zuleika, Heliconius clara .
ERKLARUNG DER TAFELN
8
|
schulzi Riffarth Q. .
8
|
aie BQ GSS
|
— hecale Fabricius &% .
novatus subnubilus Stichel 9
TAFEL I
1a, 1b. Schema des Fliigelgedders der Gattung Heliconius (H. antiochus, Linné, vergréssert 3/2).
. Heliconius nwmatus praclautus Stichel Q . .
-— silvana silvana, forma diffusa Butler 3
— mirificus Stichel 9
Seite.
4
10
II
12
14
14
15
Fig.
.-10,
Ii,
We
13.
14.
ig
r. 16.
0
18.
19.
20.
Die
Abkiirzungen fiir die Bezeichnung des Geaders :
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
TAFEL 2
. 6. Heliconius aristiona arcuella Druce & .
6a.
cydno broncus Stichel Q
— galanthus, forma diotrephes low itson 1 @
melpomene aglaope Felder &
— viffartht Stichel Q .
= timareta, forma richard Riffarth 6
TAaFEL 3
Heliconius amaryllis euryades Riffarth ot .
choarimus Hewitson Q .
aoede bartletti Druce &.
xanthocles xanthocles Bates Of .
burneyi huebnert Staudinger Q
doris viridis, forma luminosa Riffarth Q
TAFEL 4
Heliconius wallace: wallacer Reakirt Q
sapho primularis Butler Go.
antiochus antiochus Linné of
leucadia leucadia Bates
cyrbia cyrbia Godart o.
ervato callycopis, forma elimaca Erichson Gus
TAFEL 5
Schema des Fliigelgediders der Gattung Euezdes, Sectio Macroscenae (E..dianassa,vergr. 2/1)
desgl., Sectio Brachyscenae (E. helicontoides, Vorderfl. vergr. 2/1).
Heliconius evato (Pa Stichel o
— anacreon, forma ottonis Riffar th oO.
charithonia peruvianus Felder & .
telesiphe sotericus Butler ot.
Eueides isabella hippolinus, forma brunnea Suiciel Q
victim Linné of
TaFEL 6
7. Eueides lampeto fuliginosus, forma amoena Stichel of
edtas edias Hewitson Q
— pavana Ménétriés Q
— olympia Fabricius Q
heliconioides heliconioides elder és
eanes felderi, forma pluto Stichel & .
Berlin, 10. April 1906.
Vergleiche Erklarung in Fascikel 20, 31.
(GENERA INSECTORUM
FASC. XXXII-XXXIX
bh i
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Helkconius numatus praelautus Stich.d
Heliconius silvana mirtficus Stich. : TDC MDC = / Heliconius schulzi Ritt
mele HDG. = P
aif : y VR
| Pea
: Ww JHR
\ N : SVM
Noe fiat
HAY " oe
i
SM
G.Helicontus
Heliconis novatus subniubilis ‘Stich.o Heliconius hecale Fabr. 3
‘S
FAM. NY MPHALIDZ
SUBFAM. HELICONIINA
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
. . . « A . . yt
Heliconius artstiona arcuella Drace.d Heliconius cydno broncus Stich.o
Heliconius cydno galanthus, forma diotrephes Hew.© Heliconius melpomene aglaope Feld.d
Heliconius melpomene riffarthi Stich.O Heliconius melpornene timareta,forma richardi Riff 6
FAM. NYMPHALIDA.
SUBFAM. HELICONIINAL
2
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Heliconius choarinus Hew- fo)
Heliconius aoede bartletti Druce. 3 Heliconius xanthocles xanthocles Bates 3
Heliconius burneyi huebnert Stgr. 9 Heliconius dorts viridis, forma luminosa Rif 9
FAM. NYMPHALIDA
SUBFAM. HELICONIINA.
>)
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
5 : ; : 4
Heltconius sapho primularis Butl.d
se A ; . i ‘ :
Heliconius antiochus antiochus L.6 Heliconius leucadia leucadia Bates.d
Se
=
SS
Heliconius cyrbia cyrbia God.d Heliconius erato cally copis, forma elimaea Erichs.d
FAM. NYMPHALIDEA.
SUBFAM. HELICONIINA
A
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
jij <=. \5 Heliconius erato anacreon, forma ottonis Riff: 3
Same ~~
a 2 - - ra 3A ~ F . 4 .
Heliconius charithonia peruvtanus Feld.o Heliconius telesiphe sotericus Butl.d
G. Huetdes
Eucides tsabella hippolinus, forma brunnea Stich.c¢ Lueides ricurt 2.3
FAM. NYMPHALIDEA.
SUBFAM. HELICONIINA
2)
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
tes lantpeto fuliginosus, forma amoena Sach. 3 Eueides edias edtas Hew: 9
Eueides pavana Men. © Lueides olvmpita abr ©
Lucides helicorioides helicoruoides Feld. 3 Lueides eanes feldert,forma pluto Stich, 3
FAM. NYMPHALIDE
SUBFAM. HELICONIINA
6
(SENERA
INSECTORUM
PUBLIES PAR
P.WYTSMAN
—— s
a
FASCICULES XXXII-XXXIX
32. Coleoptera. Fam. Megascelide, par M. Jacopy et H. Cravargau.
33. Coleoptera. Fam. Megalopide, par M. Jacopy et H. Cravareau.
34. Hymenoptera. Fam. Ichneumonide, Subfam. Pharsaliinze - Porizontina, par
G. V. SzEPLIGETI.
35. Coleoptera. Fam. Pausside, par |]. DESNEUx.
36. Lepidoptera. Fam. Nymphalide, Subfam. Amathusiine, par H. StrcHe.
37. Lepidoptera. Fam. Nymphalide, Subfam. Heliconiine, par H. SricHeEt.
38. Coleoptera. Fam. Carabide, Subfam. Anthiine, par E. Rousseau.
39. Lepidoptera. Fam. Nymphalide, Subfam. Hyanthine, par H. Sricner.
BRUXELLES
Wi, WOEIRIMIBIN IE UNL, ee Ib. IDIES IMS a
IMPRIMEURS-EDITEURS
1905-1906
xP : 3
| LEPIDOPTERA
3922 FASCICULE
(GENERA
INSECTORUM.
DIRIGES PAR
P. WYTSMAN
EEPIDOPTERA
RHOPALOCERA
FAM. NYMHALID&
SUBFAM. HYANTINA®
von H. STICHEL
1905
PRIX: FR. 4.15
On souscrit chez M. P. WYTSMAN, Zoologiste, 43, rue Saint-Alphonse, a Bruxelles
Prospectus gratis et franco sur demande.
\asots 3
EEPIDOPTERA
FAM. NYMPHALIDA
SUBFAM. HYANTIN/
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
FAM. NYMPHALIDA
SW IB AWS Ist YAN TIN) 48,
VOI, Tal, SPM IEUE AL,
MIT I COLORIERTEN TAFEL
~ 1 Subfamilie Hyanting ist jingsten Datums. Sie wurde fast gleichzeitig von Rober und
von Stichel (1905) aufgestellt, von ersterem unter Abtrennung von der Familie Morphide
als Familie Hyantide, von letzterem durch Elimination aus den Amathustine. Vorhergehende
\ Tea Ae Autoren, wie Hewitson (1862), Haase (1888), Schatz (1889) u. a., stellten die zugehérigen
Gattungen oder, soweit ihnen bekannt, eine derselben zu den Morphid@; nur bei Herrich-Schiffer (1864)
finden wir die damals bekannte einzige Gattung Hyantis unter den Nymphalina. Die Entwickelungs-
geschichte deckt sich so mit derjenigen der Amathusting, sie beschrankt sich aber auf eine bescheidenere
Anzahl yon Daten, weil die betreffenden Gattungen vermége der geringeren Artenzahl und auch wohl
wegen der Seltenheit der Vertreter weniger haufig Anlass zur systematischen Aufzahlung und Behandlung
gegeben haben. Die Subfamilie umfasst nur zwei Genera, welche einen engen Anschluss an die Satyrine
erkennen lassen. Typus der Subfamilie ist die Gattung Hyantis.
LITERATURNACHWEIS
Hyantidae, Réber in Soc. Ent. Vol. 19, p. 170 (1905, Februar).
Hyantidae, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 306 (1905, April).
Hyantinae, Stichel ibidem, Vol. 49, p. 306 (1905).
Morphidae (part.), Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3; Index, p. 65 (1862).
Morphinae (part.), Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 115 (1871).
Morphiden (part.), Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. 187 (1887).
Morphidae (part.), Haase iu Corr. BI. Iris, Vol. 1, p. 306 (1888).
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
bo
Morphiden der alten Welt (part.), Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett. Vol. 2, p. 184 (1880).
Morphidae (part.), Hagen in Jahrb. Nassau Ver. Nat. Vol. 50, p. 79 (1897).
Morphinae (part.), Grose-Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 3 (1898).
Allgemeine Charaktere. — Iiyantine gehédren hinsichtlich der Grésse zu den exotischen
Tagschmetterlingen der Mittelstufe. Der Fliigelschnitt ist einfach : Vorderfliigel im allgemeinen Umriss
rechtwinklig dreieckig, Hinterfliigel eirund. Die beiden Gattungen der Subfamilie sind im Bau nicht
sonderlich verschieden, desto mehr aber abweichend in der Farbung. Wahrend das typische Genus den
Habitus und das Kleid von gewissen Vertretern der Gattung Taenaris der Subfamilie Amathusiinz
angenommen hat und ausser weisser Grundfarbe mit schwarzer Berandung oder schwarzbraunem
Hinterrandsfelde der Oberseite, die jener Gattung eigentiimlichen Augenflecke auf Ober- und Unterseite
in leicht verainderter Anlage zur Schau tragt, ist die Grundfarbe der anderen braun, der Vorderfliigel mit
breiter gelber Binde; indessen sind auch hier die Augenflecke auf der Unterseite des Hinterfliigels in
analoger Weise und charakteristischer Gestalt vorhanden.
Kopf und Kérper verhaltnismassig klein. Die Augen sind gross, breit- elliptisch gew6élbt, unbe-
haart ; die dreigliedrigen Palpen iiberragen den Kopf wenig oder gar nicht, sind aussen dicht, an der
Innenseite sparlicher beschuppt und behaart. Der an der Innenseite des Basalgliedes liegende chitindse
Fleck klein aber gut ausgebildet, mit feinen, kegelartigen oder fischgrétenahnlichen Gebilden regel-
missig und dicht bedeckt. Die Antennen sind diinn, etwa von der Lange der Zelle des Vordertliigels,
distal nur sehr wenig verdickt, ventral mit den fiir die Familie charakteristischen, durch feine kielartige
Grade getrennten und begrenzten zwei rillenartigen Vertiefungen, in denen, sparlich und ziemlich
gleichmiassig verteilt, feine Harchen und einzelne Borsten stehen; der Schaft der Antennen ist unbe-
schuppt, die einzelnen Glieder gut abgesetzt. Vorderfiisse beim of mit langem eingliedrigem, beim Q
mit fiinfeliedrigem Tarsus. Das Gedder ist nicht sonderlich kraftig aber norma!, Vorder- und Hinterfliigel
mit geschlossener Zelle, deren Bildung im Hinterfliigel sehr charakteristisch ist und sich nur bei
einzelnen Satyriden-Gattungen in ahnlicher Weise wiederholt. Praecostalis einfach, hakenférmig der
Fligelwurzel zugewendet.
Die Hyantinae schliessen sich im allgemeinen einerseits der Tribus Taenaridi der Amathusiinae
eng an, erinnern aber andererseits in vielen Punkten an die Satyvinae und bilden einen vermittelnden
Uebergang zwischen beiden. Auftallig ist die der einen hierher geh6renden Gattungen (Morphopsis)
eigentiimliche Endader im Hinterfligel.
Ueber die biologischen Verhaltnisse und Lebensgewohnheiten der Hyantinae ist bis jetzt nichts
bekannt geworden, alle Formen der einen dusserst variabelen Hyantis-Art gelten ebenso wie die Mor-
phopsis-Formen als selten und scheinen nach direkten oder indirekten Publikationen der Fang-Ergeb-
nisse der verschiedenen Reisenden und Sammler tatsichlich nur einzeln angetroffen zu werden.
UEBERSICHT DER GATTUNGEN
1. Hinterfliigel ohne Endader nahe dem Hinterrande . . . . . 1. Genus Hyantis, Hewitson.
2. Hinterfliigel mit Endader nahe dem Hinterrande . . . . . 2. Genus Morpuopsts, Oberthiir.
|. GENUS HYANTIS HEwWITSON
Hyantis. Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3, t. Drusilla & Hyantis 1 (Ifd. N° 68) (spec. H. hodeva) (1862) ;
Herrich-Schiaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 89(1865); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 119;
Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc. Vol. 10, p. 193 n. 542 (1875); Staudinger u. Schatz, Exot.
Schmett. Vol. 1, p. 191 (1887), Vol. 2, p. 188 (1889); Haase in Corr. Bl. Iris Vol. 1, p. 311 (1888);
Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 303 (1905).
FAM. NYMPHALIDA® 3
Allgemeine Charaktere. — Kopf ziemlich klein, Augen eirund gewélbt, Stirn kurz behaart,
Palpen dicht behaart und beschuppt, an der Innenseite sparlicher, dem Kopf dicht anliegend und ihn
kaum iiberragend. Basalglied kurz, stark gekriimmt, ventral kaum langer behaart als das Mittelglied;
Basalfleck klein, nierenférmig, an der dorsalen Kante, hart an der Wurzel liegend, dicht und gleichmissig
mit etwas nach oben gerichteten feinen Kegeln bedeckt. Mittelglied bedeutend langer, aufwiarts gerichtet,
dorsal gleichmassig kurz und ohne Biischelbildung behaart. Endglied kurz zapfenférmig, glatt. Antennen
diinn, etwa von der Lange der vorderen Zellwand des Vorderfliigels, distal ganz schwach keulig verdickt,
Schait unbeschuppt, die ventralen Rillen gut und deutlich bis zum Endglied ausgepragt, in den Vertie-
fungen der einzelnen Segmente sparlich aber gleichmissig verteilte feine Harchen und einzelne, paarweise
angeordnete Borsten. Thorax und Abdomen missig entwickelt, letzteres bedeutend ktirzer als der Hinter-
fliigel. Behaarung auf dem Thorax und vorn auf dem Abdomen linger, etwas wollig, sonst kurz und
glatt. Vorderfliigel im allgemeinen Umriss rechtwinklig dreieckig. Vorderrand schwach gekriimmt,
Apex abgerundet, Distalrand gerade, Hinterwinkel abgerundet rechtwinklig, Hinterrand beim © stark
konvex, beim © gerade. Costalis etwas tiber 2/3 der Linge des Vorderrandes. Subcostalis finfastig.
SC 1 und 2 in kurzem Abstande unter sich und proximal von der vorderen Zellecke abgezweigt, lang
auslaufend ; SC 3 in grésserem Abstande distal von der Zelle, etwa in der Mitte zwischen dieser und
der Gabelung von SC 4 und 5 abgezweigt, in die Rundung des Apex miindend. Gabel von SC 4 und 5
sehr lang, erstere ebenfalls in der apicalen Rundung, letztere vorn am Distalrande endigend. Zelle
breit und kurz, unter halber Fliigellange. V D C verkiimmert. V R hart an der vorderen Zellecke ent-
springend. M DC missig lang, in proximaler Richtung konkav gebogen, mit kurzem, in die Zelle
riicklaufendem Spitzenansatz; H R massig gekriimmt und parallel zu V R verlaufend ; H DC S-férmig
gebogen,in spitzem Winkel in den ziemlich scharf gekriimmten Bug des vorderen Medianastes einlaufend.
V Mund M M leicht gekriimmt, parallel, H M etwas naher an M M gewurzelt als die beiden ersteren
bei einander, flacher gekriimmt. S M beim ot, der Ausbuchtung des Hinterrandes entsprechend, stark
gebogen. — Hinterfliigel fast elliptisch, Vorderrand flach gekriimmt, Apex ziemlich deutlich gewinkelt,
Distalrand leicht gewellt, Hinterwinkel abgerundet, Hinterrand vorn etwas gelappt. Precostalis kurz,
hakenférmig wurzelwarts gekriimmt. Zelle geschlossen, kurz uad breit, von eigentiimlicher Bildung :
S C proximal stark hakenformig nach vorn gebogen, dann in einem flach stumpfen Winkel lang in den
Apex auslaufend. Aus dem Scheitel dieses Winkels entspringt die massig lange, schrég nach hinten
abfallende VDC. Von dieser ist MDC kurz nach hinten abgesetzt, dann scharf rechtwinklig
gebrochen, lauft lang in distaler Richtung aus, um in stumpfem Winkel in die wiederum schrag
nach hinten gestellte H DC tiberzugehen; aus dem Scheitel des Winkels der M DC lauft ein kurzer
Fortsatz in die Zelle zuriick. V R und H R anfangs parallel, leicht gekriimmt, distal letztere starker nach
hinten geneigt. H D C trifft die Mediana in spitzem Winkel und wird hierdurch die Zelle keilférmig abge-
schlossen. V M starker gekriimmt als die nur wenig divergierenden M M und HM. S M leicht gebogen,
H A geschweift, von bedeutender Lange. Beim Q die Zelle flacher, S C weniger stark ausgebogen, der
distale Schenkel der M M etwas langer, H M scharf rechtwinklig von ihm abgesetzt, quer gestellt, den
Bug des vorderen Medianastes rechtwinklig treffend. — o auf der Oberseite des Vorderfliigels mit einem
grossen, langlichen, kreideartig bestaubten Duftschuppenfleck im Hinterrandfelde, auf dem Hinterfliigel
zwischen den Adern des vorderen Feldes drei schmale, heller oder dunkler getirbte, atlasartig glanzende
Duftschuppen-Streifen mit dunklerer, matterer Begrenzung und teilweise verzweigter Einfassung.
Eine, sehr variabele, Art, die eine ungemeine Aehnlichkeit mit den weissen Arten der Gattung
Taenaris besitzt.
Schema des Fliigelgeiders. — Tafel, Fig. I.
Geographische Verbreitung der Art. — Das Fluggebiet erstreckt sich auf das Festland von
Neu-Guinea und die anliegenden Inseln.
4 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
VERZEICHNIS DER FORMEN
1. Hyantis hodeva Hewitson.
Hyantis hodeva, Hewitson, Exot. Butt. Vol. 3, t. Drusilla & Hyantis 1 f. 5, 6 (1862).
Hyantis hodeva, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1,p. 123 (1877).
Hyantis hodeva, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett. Vol. 1, p. rox, t. 63 (1887).
Hyantis hodeva, Heller in Ent. Nachr. Vol. 20, p. 371 (1894).
Hyantis hodeva, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 7, p. 107 (1894).
Hyautis (err. typ.) hodeva, Grose-Smith in Nov. Zool. Vol. 1, p. 257 (1894).
Hyantis hodeva, Hagen in Jahrb. Nassau Ver. Nat. Vol. 50, p. 79 (1897).
Hyantis hodeva, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 310, t. 4 f. 1, 2 (forma principalis) (1905).
Hyantis hageni, Rober in Ent. Zeit. Stett. Vol. 64, p. 341 (1903).
Neu-Guinea, Waigeu, Fergusson Inseln.
gy. Forma xanthophthalma Rober.
Hyantis xanthophthalma, Rober in Ent. Zeit. Stett. Vol. 64, p. 339 (1903).
Hyantis hodeva forma vanthophthalma, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 310, t. 4 f. 3 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
3. Forma helvola Stichel.
Hyantis hodzv.t forma helvola, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 311 (1905).
Neu-Guinea, loc. ?
+’. Forma microphthalma Heller.
Hyantis hodeva microphthalma, Heller in Ent. Nachr. Vol. 20 p. 371 (1894).
Hyantis hodeva var, microphthalma, Rober in Ent. Zeit. Ste:t. Vol. 64, p. 342 (1903).
Hyantis hodeva forma microphthalma, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 311, t. 4 f. 5 (1905).
Deutsch-Neu-Guinea, Andai.
o. Forma anulata Stichel.
Hyantis hodeva forma anulata, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 311, t. 4 f. 6 (1905).
Neu-Guinea, loc.?
=, Forma melanomata Staudinger. — Tafel, Fig. 2 ©.
Hyantis hodeva var. melanomata, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 7, p. 109 (1894).
Hyantis hodeva var, melanomata, Heller in Ent Nachr. Vol. 20, p. 369 (1894).
Hyantis hodeva var. melanomata, Hagen in Jahrb. Nassau Ver. Nat. Vol. 50, p. 79 (1897).
Hyantis melanomata, Rober in Ent. Zeit. Stett. Vol. 64, p. 342 (1903).
Hyantis hodeva forma melanomata, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 311, 312 f. A (Q), t. 4 f. 7 (G) (1905).
Deutsch-Neu-Guinea.
¢. Forma infumata Staudinger.
Hyantis hodeva var. infumata, Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 7, p. 108 (1894).
Hyantis infumata, Grose-Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 3, t. Morphinae f. 2 (Text: H. hodeva var. infumata) (1898).
Hyantis hodeva var. tnfumata, Rober in Ent. Zeit. Stett. Vol. 64, p. 342 (1903).
Hyantis hodeva forma tnfumata, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 312, t. 4 f. 8 (1905).
Waigeu, Nord-West Neu-Guinea,
7, Forma fuliginosa Grose-Smith u. Kirby.
Hyantis fuliginosa, Grose-Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Vol. 3, t. Morphinae f. 3 (Text : H. hodeva var. fuligt-
masa) (1898).
Hyantis hodeva forma fuliginosa, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 45, p. 312 (1905).
Kapaur.
o. Forma oxyophthalma Stichel. — Tafel, Fig. 3 Gc.
Hyantis hodeva forma oxyophthalma, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 312, t. 4 f. 9 (1905).
Andai.
2. GENUS MORPHOPSIS, OBERTHUR
Morphopsis. Oberthur in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova Vol. 15, p. 513 (1880); Hagen in Jahrb.
Nassau Ver. Nat. Vol. 50, p. 79 (1897); Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 303 (1905).
Allgemeine Charaktere. — Kopf klein, Augen breit eirund gewélbt, nackt; Stirn kurz behaart,
Palpen an der Aussenseite dicht, an der Innenseite sparlicher beschuppt und behaart, eng an dem Kopf
%
Z
,
,
}
q
q
.
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¢
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(
RAM. NYMPEHAETD AS 5
anliegend, diesen nicht tiberragend. Basalglied kurz, aufwarts gekriimmt, ventral mit zottig in Biischeln
abstehenden, langeren, straffen Haaren; Basalfleck sehr klein, auf die Dorsal-Ecke an der Basis des
Gliedes beschrankt, hell-braun chitinisiert, in ganzer Ausdehnung von sehr feinen und kurzen, aufrechten,
kegelartigen Gebilden bedeckt, im tibrigen die Innenflache des Palpengliedes sehr sparlich beschuppt,
einzelne lanzettliche schmale Schuppen die Rander des Fleckes tiberragend, der Riicken diinn behaart.
Mittelglied bedeutend langer, dorsal und ventral etwas langer behaart, die Beschuppung an der Innen-
seite leicht gescheitelt, ohne Haarschopf am distalen Ende; Endglied scharf abgesetzt, sehr kurz,
zaptenartig zugespitzt. Antennen diinn, unter halber Fliigellange, distal allmahlich etwas verdickt, Schatft
nicht beschuppt, die Rillen ventral gut ausgebildet, in den Vertiefungen der einzelnen Segmente die
Harchen unregelmissig aber ziemlich dicht stehend, Borstenhaare einzeln vorhanden. Thorax und Abdo-
men ziemlich schwach, letzteres kaum von halber Lange des Hinterfltigels, beide kurz, an den Einschnit-
ten wollig behaart. Vorderfliigel gedrungen, rechtwinklig dreieckig. Vorderrand ziemlich stark gekriimmt,
Apex stumpi abgerundet, Distalrand leicht konkav, Analwinkel abgerundet rechtwinklig, Hinterrand
beim ¢& lappig ausgebogen. Costalis und Subcostalis getrennt; erstere miindet etwa in der Mitte des
zweiten Drittels des Vorderrandes in diesen. Subcostalis fiinfistig, alle Aeste frei. SC 1 zweigt sich in
kurzer Entfernung proximal vom vorderen Zellende, SC 2 dicht an demselben ab, beide in gestreckt
schrager Richtung in den Vorderrand einlaufend. S C 3 entspringt in betrachtticher Entfernung distal
vom Zellende und miindet in den Anfang der apikalen Rundung. SC 4 und 5 bilden eine lange Gabel,
erstere in den Apex, letztere vorn in den Aussenrand auslaufend. Zelle breit und kurz, unter halber Flii-
gellange. V DC sehr kurz, fast ganz verkiimmert; MDC lang, in flachem Konkavbogen in die Zelle
einspringend, mit kurzem, spitzem, riicklaufendem Aderansatz; H DC etwas kiirzer, in entgegengesetzter
Richtung flach gebogen, rechtwinklig zur Mediana gestellt. Die Radiales in paralleler, flach gekriimmter
Richtung verlaufend; V M etwas starker, gekriimmt als die beiden anderen etwa parallel laufenden
Medianaste; SM etwas geschweift. — Hinterfliigel etwa eirund. Vorderrand proximal flach gekriimmt,
von der Mitte ab ziemlich gestreckt schrig abfallend. Apex stumpf geeckt, Distalrand kreisbogenférmig,
Analwinkel abgerundet, leicht markiert, Hinterrand vorn etwas gelappt. Praecostalis stark hakenformig
wurzelwarts gekriimmt. Costalis nach vorn scharf ausgebogen, nahe der Praecostalis nach hinten etwas
stumpfwinklig gebrochen. im letzten Drittel der Linge des Vorderrandes auslaufend. Subcostalis
proximal als vordere \Vand der Zelle bauchig ausgebogen, der Costalis sehr gen&hert, mitunter mit
derselben durch eine kurze Queraderbildung vereinigt, wodurch eine schmale, langliche Praecostalzelle
entsteht; die SC hierauf flacher gekriimmt, in den Apex miindend; Zelle kurz und breit, vollkommen
geschlossen, von dhnlicher Bildung wie die der vorigen Gattung; V DC schraég nach hinten abfallend,
M DC bedeutend langer, rechtwinklig gebrochen, der vordere Schenkel sehr kurz, vom Scheitel des
Winkels ein kurzer, in die Zelle riicklaufender Fortsatz; H DC etwas steiler nach hinten gerichtet, beim
& die Mediana in spitzem Winkel treffend und die Zelle mit dieser keilf6rmig abschliessend. Die Radia-
les leicht gekriimmt, annahernd parallel, VM und MM nahe aneinander gelegen, H M etwas weiter
abgeriickt, sonst normal, wie auch S M, die leicht gekriimmt ist. H M etwas geschweift, ziemlich lang.
Ausse- der Hinterrandader, nahe dem Hinterrande, diesem folgend und nahezu in halber Linge
desselben miindend, eine feine aber deutlich rohrige Endader. — of auf der Oberseite des Hinterfliigels
mit einer breiten, matt glanzenden Duftschuppenflache.
Nur eine, ziemlich grosse Art, die in ihrem Habitus an gewisse Satyriden (Neorhina) erinnert aber
keinen Analzipfel am Hinterfliigel besitzt.
Schema des Fligelgeiders. — Tafel, Fig. 4.
Geographische Verbreitung der Art, — Die eine Art der interessanten Gattung ist nur aus
Neu-Guinea bekannt.
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
VERZEICHNIS DER FORMEN
1. Morphopsis albertisi Oberthiir.
a. Morphopsis albertisi albertisi Oberthiir.
Morphopsis albertist, Oberthtr in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova. Vol. 15, p. 513, t. 2 f. 3 (M. d’Albertisi) (1880)
Morphopsis albertist, Grose-Smith in Novit. Zool. Vol. 1, p. 357 (1894).
Westliches Neu-Guinea : Andai (Geelving-Bay).
b. Morphopsis albertisi astrolabensis Stichel. — Tafel, Fig. 5.
Morphopsis albertist astrolabensis, Stichel in Berl. Ent. Zeit. Vol. 49, p. 307 (1905).
Morphopsis d@ Albvertist, Hagen in Jahrb. Nassau Ver. Nat. Vol. 50, p. 79 (1897).
Oestliches Neu-Guinea : Astrolabe-Bay ; Humboldt-Bay (?).
Zur Feststellung der Synonymie und zur Gruppierung der Formen der Gattungen, namentlich
Hyantis,war mir das von den Herren Ch. Oberthiir (Rennes),G.Weymer (Elberfeld) und Réber (Dresden)
in zuvorkommender Weise iiberlassene Material sehr niitzlich. Die Untersuchung der miannlichen
Copulationsorgane bestitigte den Zusammenhang der dusserst mannigfaltigen Variationsstufen von
Hyantis hodeva zur Geniige und habe ich mich hieriiber bereits eingehend in der Berl. Ent. Zeit. Vol. 49
gedussert.
ALPHABETISCHES INHALTSVERZEICHNIS
Hyantis.
albertisi, Morphopsis
albertisi, Morphopsis albertisi
anulata, Hyantis hodeva forma .
astrolabensis, Morphopsis albertisi.
@ Albertisi, Morphopsis .
fuliginosa, Hyantis. . . .
fuliginosa, Hyantis hodewa forma .
hagent, Hyantis 0 '¢
helvola, Hyantis hodeva forma .
hodeva, Hyantis .
(Synonyma sind kursiv gedruckt.)
A. GATTUNGEN
Seite.
2
Morphopsis.
B. ARTEN UND FORMEN
Seite.
6
6
infumata, Hyantis
infumata, Hyantis hodeva forma (var.)
melanomata, Hyantis Bees Uo
melanomata, Hyantis hodeva forma (var.)
microphthalma, Hyantis hodeva forma (var.)
oxyophthalma, Hyantis hodeva forma .
xanthophthalma, Hyantis .
xanthophthalma, Hyantis hodeva
Seite.
FAM. NYMPHALIDA® 7
ERKLARUNG DER TAFEL
Seite
Fig. 1. Schema des Fliigelgeiders der Gattung Hyantis (H. hodeva Hewitson 6, vergr. 5/4) . 4
— 2. Hyantis hodeva forma melanomata Staudinger Q 4
— 3. Hyantis — — oxyophthalma Stichel & Be ihe ay oats be oe ere it 4
— 4. Schema des Fliigelgeaiders der Gattung Morphopsis (M. albertisi Oberthiir G, vergr. 6/5) . 4
— 5. Morphopsis albertist astrolabensis Stichel 6
Fig. 2, 3u. 5 Ad. Huwe, Fig. 1 u. 4 H. Stichel ad nat. del.
Wegen der Abkiirzungen wird auf die Erklarung in den vorhergehenden Lieferungen der
Nymphalide verwiesen.
Hierzu : E A = Endader.
Hagen in Westfalen, 10. August 1905.
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
fiyantis hodeva,forma melanomata Staud. 9
HAN MM
G. Hyantis ¥) G. Morphopsis (£)
Hyantis hodeva,forma oxyophthalma Stich. 3 Morphopsis albertisi astrolabensis Stich. 3
FAM. NYMPHALIDA
SUBFAM. HYANTINEA.
63™e FASCICULE LEPIDOPTERA
~
PeENERAG
INSECTORUM
DIRIGES PAR
P.WYTSMAN
LEPIDOPTERA
RHOPALOCERA
FAM. NYMPHALID&
SUBFAM. DIONINA®
von H. STICHEL
1907
PRIX : FR. 14.70
On souscrit chez M. P. WYTSMAN, Zoologiste, 43, rue Saint-Alphonse, a Bruxelles.
Prospectus gratis et franco sur demande.
LEPIDOPTERA
FAM. NYMPHALID#
SUBFAM. DIONINZ
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
FAM. NYMPHALIDA
SOV AIME. — IDILON| IN| 28,
von H, STICHEL
MIT 2 COLORIERTEN TAFELN UND I SCHWARZEN TAFELN
ER [ypus dieser hiermit neu eingefithrten Subfamilie ist die Gattung Dione Hiibner. Ihr
schliessen sich zwei weitere amerikanische Gattungen und ein indo-australisches Genus
an, denen bisher von den meisten Autoren ihre Stellung bei den Nymphalide angewiesen
>; 24 wurde. Sie gehdren zu denjenigen Einheiten, die von Latreille (1825) als « Genres » unter
«les Nacrés» (Perlata) mit den meisten damals bekannten Nymphaliden zusammengefasst worden sind. Bei
dem Versuch der Einteilung der Lepidopteren nach der Raupenform erhielten sie durch Horsfield (1828)
und spdter durch Horsfield und Moore (1857) ihren Platz in den Stirpes mit Thysanuriform und mit
Chilopodiform- oder Scolopendriform-Larve. Als Nymphalides bezeichnete sie Boisduval u. Leconte (1833),
als Nymphalide Doubleday (1844, 1852) und als Nymphalina Herrich-Schaffer (1865). Sie wurden alsdann
in 4hnlichem oder gleichem Sinne in ihrer Gesamtheit oder einzeln als Teil der Familie Nymphalidae
oder der Subfamilie Nymphaling und innerhalb dieser Hinheiten als Gruppen mit verschiedenen Namen
bis in die neueste Zeit behandelt. Ihrer habituellen Ahnlichkeit mit anderen Gattungen wegen bezeichnete
sie Butler (1869) als Avgynnides, Schatz (1887) wahlte die Bezeichnung Avgynnis-Gruppe, Semper (1887)
stellte eine der in Betracht kommenden Gattungen zur Cyntiia-Gruppe und Blanchard (1840), ahnlich
auch Chenu und Lucas (1853), bildeten weitere selbststandige Einheiten in ahnlicher Begrenzung unter
der Bezeichnung Argynnites und Argynite. Bereits 1860 indessen wies Koch auf die nahen verwandt-
schaftlichen Verhdltnisse der Gattungen Colaenis und Dione mit den Helicon s. str. hin und auch
F. Miller (1877) vereinigte die siidamerikanischen Vertreter der neuen Subfamilie auf natiirlicher
Grundlage mit den Helicontine unter der vulgaren Bezeichnung Maracwjafalter. In gleicher Weise, aber
unter Substituierung anderer Benennung, verfahren W. Miiller (1886), S. H. Scudder (1889),
2 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Haase (1891) und Reuter (1896). Vereinzelt traten neuerdings noch andere Bezeichnungen von
Schalt-Einheiten auf, denen die eine jeweilig behandelte indo-australische Gattung zugeteilt worden ist,
so bei Doherty (1886) Afatwride, Fruhstorfer (1900) Euthalide.
Die Schwierigkeit, den geteilten und begriindeten Ansichten gerecht zu werden, scheint dadurch
am besten behoben, dass die gedachten Gattungen zu einer Sondereinheit als Subfamilie zusammen-
eefasst werden, die einerseits vermége biologischer Verhiltnisse mit den Heliconiine harmoniert,
andererseits in morphologischer Hinsicht zu den Nymphaline s. str. neigt, also eine vermittelnde
Uebergangsstellung zwischen diesen beiden Subfamilien einnimmt. Unbedenklich von vornherein
erscheint dies beziiglich der drei amerikanischen Gattungen ; da sich aber die indo-australische Gattung
(Cethosia) in biologischer Hinsicht mit ersteren vollkommen deckt und auch sonst Eigenschaften hat,
welche auf unmittelbaren Zusammenhang mit Dione deuten, konnte sie trotz habitueller Verschieden-
heiten nicht ausgeschlossen werden, der unmittelbare Verwandtschaftsgrad ist auch schon von 4lteren
Autoren (Godart, Latreille, Ménétriés), welche unter diesem Gattungsnamen gewisse Arten der « Mara-
cujafalter » beschrieben und analysierten, bewusst oder unbewusst anerkannt worden.
Wegen der haufigen Wiederholung ein und derselben Bezeichnung der Einheit, denen die
eliminierten Gattungen bisher einverleibt worden sind, enthalt der Literaturnachweis beziiglich der
Nymphalide nur die Citate aus grésseren, zusammenhangenden Arbeiten oder aus wichtigeren, allgemein
systematischen Abhandlungen.
LITERATURNACHWEIS
Perlata (part.). Latreille, Fam. Nat. Regne Anim., p. 468 (1825).
Thysanuriform-Stirps (part.). Horsfield, Descr. Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp., Vol. 1, p. 61 (1828).
Chilopodiform or Scolopendriform-Stirps (part.). Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind.
Comp., Vol. 1, p. 120 (1857).
Nympbhalides (part.). Boisduvalu. Leconte, Lép. Amér. sept., Vol. 1, p. 142 (1833).
Nymphalidae (part.). Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep., Vol. 1, p. 64 (1844).
Nymphalidae (part.). Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep., Vol. 2, p. 143 (1852).
Nymphalideas, Tribus (part.). Lucas in Sagra, Hist. fis: Cuba (2), Vol. 7, p. 225 (1856).
Nymphaliden (part.). C. Felder in Nova Acta Leop. Car. Akad., Vol. 18, n. 3, p. 4 (186r).
Nymphalidae (part.). Morris, Synops. Lepid. N. Amer., Vol. 1, p. XIX, 40 (1862).
Nymphalinae (Group Nymphalitae) (part.). Bates in Journ. Ent., Vol. 10, p. 186 (1864).
Nymphalina (part.). Herrich-Schaffer in Corr. Bl]. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 74 (1865).
Nymphalinae (Group Argynnides) (part.). Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 46, roo (1869).
Nymphalinae (part.). Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 147 (1871).
Nymphalinae (part.). Edwards in Trans. Amer. Ent. Soc., Vol. 6, p. 19 (1877).
Nymphalinae (part.). Moore, Lep. Ceyl., Vol. 1, p. 26 (1881).
Nymphalinae (part.). Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1, p. 166 (1881).
Nymphalidae (Group Nymphalina) (part.). Distant, Rhop. Malay., p. 83 (1882).
Nymphaliformes (part.). Doherty in Journ. Asiat. Soc. Bengal. (2), Vol. 54, p. 108 (1886).
Nymphaliden (Argynnis-Gruppe) (part.). Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86, Vol. 2,
p. 108 (1887).
Nymphalinae (Cynthia-Gruppe) (part.). Semper, Schmett. Philipp., p. 75, 76, 99 (1887).
Nymphalinae (part.). Leech, Butt. Chin. Jap. Cor.. p. 116 (1894).
Nymphalinae (part.). Kirby, Handb. Lep., Vol. 1, p. 43 (1894).
Nymphalinae (part.). Nicéville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal., Vol. 64, p. 398 (1895).
Nymphalinae (Group Nymphalina) (part.). Nicéville u. Manders, ibidem, Vol. 68 (2), p. 190 (1900).
FAM. NYMPHALID/® 3
Nymphalinae (Group Argynnina) (part.). Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 175 (1900).
Nymphalinae (part.). Holland, Butterfly Book, p. 93 (1gor).
Nymphalidae (part.). Dyar in Bull. U. S. Nat. Mus. n. 52, p. 12 (1902).
Nymphalinae (part.). Bingham in Faun. Brit. Ind. Butt., Vol. 1, p. 203 (1905).
Nymphalinae (part.). Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc. n. 45 (1905).
Nymphalinae (part.). Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit., Vol. 25, p. 310 (1906).
Argynnites (part.). Blanchard in Hist. Nat. Ins., Vol. 3, p. 438 (1840).
Argynitae (Divisio) (part.). Chenu u. Lucas in Encycl. Papill., p. 80 (1853).
Argynnina (Group.) (part.), Moore, Lep. Ind. Vol. 4, p. 175 (1900).
Heliconier (part.). Koch in Ent. Zeit. Stett., Vol. 21, p. 232 (1860).
Heliconiidae (part., als Maracujafalter). F. Miiller in Kosmos, Vol. 1, p. 391 (1877); Ent. Zeit.
Stett., Vol. 38, p. 492 (1877); Zeitschr. Wiss. Zool., Vol. 30, p. 166 (1878).
Heliconinae (part.). W. Miiller in Zool. Jahrb., Vol. 1, p. 428 (1886).
Heliconiinae (part.). S. H. Scudder, Butt. East. U. S. Can., Vol. 3, p. 1811 (1889).
Heliconinae (part.). Haase in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 4, p. 31 (1891).
Heliconiinae (part.). Reuter in Acta Soc. Sc. Fenn., Vol. 22, p. 426, 554 (1896).
Apaturidae (?Subdiv. Cynthinae) (part.). Doherty in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 55 (2), p. 109
(1886); Vol. 60 (2), p. 171 (1801).
Euthaliidae (part.). Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit., Vol. 45, p. 15 (1900).
Allgemeine Charaktere, — In der Grésse nehmen die Dioning eine Mittelstufe der Tagfalter
ein. Der Fliigelschnitt ist bei einem Teil der Arten schlank, dem der Heliconiine ahnlich, die Vorder-
fliigel am Apex gerundet oder etwas geeckt, bei einem anderen Teil breiter, die Vorderfliigel fast
rechtwinklig dreieckig, die Hinterfliigel am Distalrande stark gezackt (Cethosca). Die Farbe der Fliigel-
Oberseite ist meist lebhaft, in einem Falle (Metamandana) griin, sonst rétlich, braun, oder gelblich mit
dunklen Flecken und Binden, oder rot bis rauchbraun mit weissen Binden und Flecken und schwirz-
lichen Figuren und Zeichnungen verschiedener Art, die Grundfarbe zuweilen blaulich oder violett
schimmernd. Bei einer Gattung (Cethosta) haufig starker Dimorphismus der Geschlechter vorhanden,
das Q hierbei nicht selten von weisslicher Grundfarbe. Auf der Unterseite tritt bei abweichender
Zeichnung gegen oben auf dem Hinterfliigel mehr oder weniger reiche Silberfleckung auf und bei der
indo-australischen Gattung besonders bunte Muster von rotbraunen und bindenartig gelblich und weiss
abwechselnden Flachen mit schwarzen Linien, Figuren und Flecken oder ein einténig rauchbrauner
Fond mit schwarzen und weisslichen Flecken.
Kopf und Kérper in normaler Grésse. Augen gross, breit eirund gewélbt, nackt. Die dreigliedri-
gen, breiten Palpen iiberragen den Kopf, liegen aber nur etwa zur H4lfte der Stirn an; ihre Innenseite
ist sehr sparlich, die Aussenseite dichter behaart, an der Ventralseite stehen lange Grannenhaare, dorsal
am Mittelgliede sind die Haare schopfartig abstehend. Basalfleck an der Innenseite des Wurzelgliedes
klein, von verschiedener Bildung. Antennen diinn und lang, distal kolbig oder stark keulenformig
verdickt, an der Ventralseite mit zwei durch Lingsgrade geteilte und begrenzte Furchen, in denen feine
Harchen und paarweise stirkere Borstenhaare stehen. Vorderfiisse des Gt verkiimmert, mit einglie-
drigem langen Tarsus. die des Q mit fiinfgliedrigem, bedorntem Tarsus, das Proximalglied langer oder
ebenso lang als die vier Endglieder. Das Gedder ist proportioniert, die Zelle des Vorderfliigels geschlossen,
diejenige des Hinterfliigels offen oder durch eine Scheinader geschlossen, Praecostalis einfach, distal
wurzel- oder apicalwarts gekriimmt.
Die Dionne fliegen bei Tage im Sonnenschein in Waldlichtungen, am Waldrande, in Kulturen
und Garten, an buschbewachsenen Hangen, in der Savanne und auch auf sumpfigen Stellen. Gewisse
Cethosia-Arten scheinen schattige Orte zu bevorzugen, wenigstens werden sie als Waldschmetterlinge
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
geschildert, welche sowohl hohes wie niedriges Gebtisch aufsuchen. Das diistere Griin des Waldes
gewinnt einen lebendigeren Anblick durch die Anwesenheit zahlreicher solcher lebhaft beweglicher und
prachtig gefarbter Falter. Ihr Flug erinnert an den der Danainae, ist wenig kraftig aber ausdauernd., eigen-
timlich « rollend », wobei die Fliigelspitzen einen Kreis zu beschreiben scheinen (Seitz MS.-Notiz).
Sie lieben es, sich am Waldrande gaukelnd hin und her zu tummeln (Metamandana), wobei sie erst
langsam in einer Richtung vorwarts flattern, dann plétzlich mit einem Ruck umdrehen und den
namlichen Weg zuriickkehren (Cethosta nietneri u. Col. phaetusa : Seitz, MS.-Notiz); sie ruhen auf
Blattern mit aufgeschlagenen Fligeln oder auch im Sande am Boden und saugen an Bliiten der
Straucher und an Blumen. Die Falter sind meist Bewohner der Ebene, der Flusstaler und des
«heissen » Landes, weniger der Hochebene, und nur einige siidamerikanische Arten steigen in der
Hoch-Cordillere bis zur Grenze des Baumwuchses (C. euchvoia, D. moneta, D. glycera). In allen ihren
Lebens-Gewohnheiten dhneln sie den Helicontinae. (Nach Bates, Miller, Hahnel, Michael,
Hagen, Fruhstorferu. a.)
Allgemein wird berichtet, dass die frisch gefangenen Schmetterlinge dieser Subfamilie einen
gewissen Duft verbreiten, welcher von einigen Seiten als sduerlich und streng (Hahnel bei Dione,
bezw. de Nicéville bei Cethosta), von anderer Seite als aromatisch (Fruhstorfer bei Cethosta myrina) und
endlich bei den siidamerikanischen Gattungen als widerlich (F. Miller) bezeichnet wird. Bei letzteren
ist das Wesen und der Ursprung dieses Riechstoffes Gegenstand naherer Untersuchung gewesen.
Abgesehen von einer Anzahl zwischen den normalen Staubschuppen im Costalfelde des Hinterfliigels
eingestreuten. am Distalende ausgefransten anormalen Schuppen, die als Dufterzeuger gedeutet werden,
besitzen die Schmetterlinge dieser Gattungen, ebenso wie die Heliconii, am Ende des Hinterleibes zwei
Wiilste, die ausgestiilpt werden k6nnen, nach dem Geschlecht des Falters verschieden gestaltet und
gelegen sind und nach menschlicher Sinnesempfindung widerlich riechen. Beim © befinden sie sich
an der Innenseite der sogenannten Afterklappen (Valven), bei den QQ werden diese sogenannten
Stinkwiilste am Ende des Hinterleibes dorsal zwischen dem vorletzten und letzten Segment vorgetrieben,
sind von gelblicher Farbe und werden durch eine seichte Liangsfurche in eine rechte und eine linke
kugelig gewélbte Halfte geteilt. Unterhalb der Wiilste befindet sich je ein gestieltes Kélbchen (Stink-
k6élbchen), ahnlich einer Stecknadel mit verkiirztem Schaft, und zwar oben am Hinterrande des
vorletzten Bauch-Ringes. Diese Kélbchen scheinen die eigentlichen Vertreiber des Riechstoffes zu sein,
der in den Wiilsten erzeugt oder aufgespeichert wird. Wenn der Wulst vorgestiilpt wird, springen
sie nach hinten und aussen vor; sie sind bei den verschiedenen Arten etwas abweichend voneinander
gestaltet, ihr Kopf ist mit Schuppen von verschiedener Gestalt, die den Fliigelschuppen dhneln, besetzt,
diese Schuppen lassen sich aber nur bei frisch aus der Puppe geschliipften Tieren erkennen, spaterhin
sondert sich zwischen ihnen der Stinkstoff als gelbliche Masse ab und verklebt die Oberflache des
Gebildes. (Nach F. Miiller.)
Obgleich die Entwickelung einer Reihe von Arten der hierher gehédrenden Gattungen in mehr
oder weniger vollkommenem Masse beobachtet und beschrieben ist, sind die Kenntnisse der biolo-
gischen Verhidltnisse im allgemeinen noch diirftig, Vom Ei der Dionine weiss man nur, dass es
halbkugelig, oben etwas abgeflacht (konoidal), mit konzentrischen feinen Riefen versehen (D. vanzllae)
und von gelber Farbe ist; es wird einzeln an die Unterseite der Blatter oder an die Stengel der
Nahrungspflanzen abgelegt (M. dido, D. vanillae). Abgesehen von der phantastischen Abbildung der
Madame Merian, welche die Raupe von D. vanillae auf der Vanille-Orchidee darstellt (daher der
unpassende Name), stimmen die Beobachtungen der Gewahrsmanner dahin tberein, dass alle aufge-
fundenen Raupen von Arten dieser Subfamilie an Passiflovaceae oder wenigstens an Schlingpflanzen
leben, deren ZugehGrigkeit zu dieser Familie als wahrscheinlich gedeutet ist. Im besonderen sind als
Nahrungspflanzen genannt : Passiflora ichthyura Masz., Passiflova vellozit Gardn., P. caerulea L., P. qua-
FAM. NYMPHALIDZ: 5
drangularis L. und P. incavnata (tiir Colaenis und Dione), ferner Modecca palmata Lam., Balbas baquero
und Passifiora foetida \.. (fiir Cethosia).
Hine u. a. in den ersten Entwickelungstadien bei gewissen Raupen (M. dido, C. 1ulia) beobachtete
Eigentiimlichkeit der Lebensweise besteht darin, dass sie vom Rande des Blattes ihrer Nahrpflanze
unweit und langs des Blattsaumes einen schmalen Gang ausfressen, der bis tiber 2 cm lang sein kann
und ihnen als Aufenthaltsort wahrend de: Ruhe dient. Im itibrigen leben die Raupen nach der Ueberlie-
ferung mehrerer Beobachter gesellig und sind namentlich in der Jugend in Kolonieen dicht gedrangt
beieinander sitzend gefunden worden (Cethosia). Im Charakter gleichen sie den Heliconius-Raupen fast
genau. Der Kopf ist rundlich, auf dem Scheitel etwas gekerbt, mit zwei meist schwach divergierenden
Hérnern (? fehlend bei D. juno) von Gesichtslange oder etwas langer. Der Kérper ist walzenférmig, an
den einzelnen Gliedern tief eingeschnitten, bei den Arten der stidamerikanischen Gattungen mit sechs
Reihen langer verzweigter Dornen besetzt, die in der Jugend nur als geknépfte, auf Warzen stehende
Primar-Borsten vorhanden sind. Von den Dornen stehen zwei Reihen in subdorsaler, je eine seitliche
Reihe in suprastigmaler und je eine in infrastigmaler Linie. Ueber die meisten Raupen der Gattung
Cethosia fehlen diesbeztigliche genaue Angaben, jedoch ist aus der Beschreibung der Raupen von
C. ntetnert, C. hypsina u. C. logani, die mit verdstelten Dornen geschildert werden (Moore, de
Nicéville), auf gleiche Beschaffenheit bei den iibrigen zu schliessen, wenngleich mehrere, anschei-
nend ungenaue Abbildungen anderer Arten diese Eigenschatt nicht erkennen lassen. Die Farbung des
Korpers ist sehr verschieden, auch im Laufe der Wachstums veranderlich. Das vorherrschende Zeich-
nungsprinzip bei erwachsenen Tieren ist die Bildung von farbigen, giirtelartigen Querbinden oder
Ringen und eines mehr oder weniger deutlichen und zusammenhiangenden Infrastigmalstreifes. Hérner
und Dornen sind stets schwarz. Raupen von Metamandana und Colaenis sind in der Jugend unscheinbar
gelblich oder braun mit weissen Querstreifen auf den Segmenten, einer lebhaft gelbroten Zone um die
suprastigmalen und mit hellen Flecken um die subdorsalen Borsten. Spiater erweitern sich die hellen
Streifen und Flecke auf Kosten der dunklen Teile und es bilden sich dunkle teilweise zusammenlaufende
Querstreifen auf hellem Grunde. Im anderen Falle (D. vanillae) ist die Grundfarbe schwarzbraun mit
einem anfangs gelbgriinen spater orangefarbenen Dorsalstreif, der durch eine schwarze Mittellinie der
Lange nach geschnitten ist; die Kérperseiten tragen in der Jugend einen schmalen hellen Stigmastreif
und an der Wurzel gewisser subdorsaler und suprastigmaler Borsten liegen weisse Flecke, die spater
verschwinden; auf bestimmten Stellen der Segmente treten dann weisse Warzen mit schwarzen Borsten
auf, und unter den subdorsalen Dornen erscheint eine orangefarbene Linie.
Cethosia-Raupen sind von schwarzer oder brauner Grundfarbe mit gelben Einschnitten oder
umgekehrt (C. damasippe bezw. C. eurvymena) auch braun und rot geringt mit je einem gelben Giirtel auf
dem 6. und 8. Segment (C. mahvatta, C. nietneri) oder braun, abwechselnd gelb und rot geringelt (C. cyane).
Eine Art aus Sumatra (als C. cyane bezeichnet, vermutlich = cavolinae Forb.) wird als scharlachrot
mit weissem Giirtel geschildert und C. logani ist schmutzig gelbgriin mit braunen Ringen.
Auch die Puppe der Dionine zeigt grosse Ahnlichkeit mit derjenigen der Heliconiine. Sie ist
hangend, ziemlich schlank, am Kopf mit zwei schlichten oder blattartigen, massig langen Hérnern oder
Spitzen, die Fliigelscheiden vortretend, der Kérper dorsal dementsprechend sattelartig eingedriickt, auf
den Abdominalsegmenten und dem Riicken zahlreiche Warzen und Hécker. Farbe unscheinbar
schwarz, weiss und grau gemischt (Metamandana, Colaenis) oder bréunlich, heller und dunkler schattiert
und schwarzlich gefleckt (Cethosia), dorsal mit Gold- oder Silberflecken. Entwickelungszeit fiir die Raupe
23, Puppenruhe 14 Tage (Metamandana); fir Cethosia ist die Entwickelung vom Ei bis zur Imago auf
etwa einen Monat veranschlagt. (Nach W. Miiller, Dewitz, Sepp, W. H. Edwards, Moore, Hagen,
de Nicéville, Ribbe, Semper.)
6 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
UEBERSICHT DER GATTUNGEN
1. Praecostalis des Hunterfliigels distal hakenformig gegen den Apex
gekviimmt, zuwetlen mit einem rudimentiven Zwergansatz in entgegen-
gesetstey Richtung. Zelle des Hinterfliigels in dey Regel durch eine
feine Scheinader geschlossen, Klauen dey Mittel- und Hinterfiisse ohne
Anhinge Ree See Mee bit gies Bas bite 2 4) GenusiCETHosiAy Pabricius:
Praecostalis des Hinterfliigels gegen die Fliigelwurzel gebogen. Zelle
des Hinterfliigels offen, zuwetlen an HR und VM Rudimente einer
NATO CTLERTOR Sy te Raa Ca? ae a areas Li nine AaB Seek sanyo Pigot fav cube | cof! occa ©.” Bp
2. Subcostalast r proximal vom Zellende abgezweigt. . . . . . . . 4. Genus METAmMANDANA, Stichel.
Subcostalast r am Zellende oder kuvz distal vom thm abgezweigt . . =. . 2 1. lett
3. Klauen dey Mittel- und Hinterftisse mit Anhangen, letzter Tarsus mat
stavk ausgebildetem Ballen. In dey Regel HDC des Vorderfliigels
gewinkelt oder H R aus dem Scheitelwinkel von MDC und HDC
entspringend Se REE ct NR ALA el Gu aM a lita! Whe dy
Tarsus dey Muittel- und Hinterfiisse ohne Ballen, thre Klauen ohne
Anhinge. In dey Regel die MDC gewinkelt. . . . . . . . 3. Genus Dione, Hiibner.
2. Genus CoLaenis, Hiibner.
|. GENUS METAMANDANA, STICHEL, NOV. NOM. 1).
Nymphalis, Subgen. (part ). Linné, Syst. Nat. (12), p. 782 (spec. : Papilio (N.) dido) (1767).
Nereis. Hiibner, Exot. Schmett., Vol. 1, t. 17 (spec. : N. viridis dido) (1806-109).
Metamorpha (part.). Hiibner, Verz. Schmett., p. 43 (1816); idem, Samml. Exot. Schmett., Vol. 2,
Index zu Vol. 1 (spec. : M. dido) (1821); Godman & Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop.,
Vol. 1, p. 166 (1881); Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett., Vol. 2, p. 113 (1887); Kirby,
Handb. Lep., Vol. 1, p. 17 (1894); Reuter in Acta Soc. Sc. Fenn.. Vol. 22, p. 50 (1896);
Kirby in Hiibner u. Geyer, Neue Ausg., p. 13 (1901); Rober in Soc. Ent., Vol. 20, p. 177 (1906).
Cethosia (part.). Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 246 (1819); Lucas, Lép. Exot.,
p- 104 (1835); Cuvier, Régne Anim., Edit. Masson, p. 243 (1836); Duncan, Foreign Butt.,
p- 145 (1837). (Cit. omn. spec. : C. dido).
Philaetria (part.). Billberg (Dalmann M. S.), Enum. Insect., p. 77 (spec. : P. dido) (1820).
Agraulis (part.). Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep.. p. 65 (1844); Erichson in Schomburgk, Reis.
Guiana, Vol. 3, p. 596 (1848). (Cit. omn. spec. : A. ddo).
Colaenis (part.) Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep., Vol. 1, p. 148 (1848); Chenu
u. Lucas in Encycl. Papill., p. 82 (1853); Lucas in Sagra Hist fis. Cuba (2!, Vol. 7, p. 226
(1856); C. Felder in Nova Acta Leop. Car. Akad., Vol. 18, n° 3, p. 7 (1861); C. u. R. Felder in
Wien. Ent. Mon., Vol. 6, p. 110 (Sect. III) (1862); Bates in Journ. Ent., Vol. 2, p. 186 (1864);
Herrich-Schaffer in Corr Bl. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 105 (1865); Butler, Cat. diurn. Lep.
Fabr., p. 118 (1869); Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 147 (1871); Scudder in Proc. Amer. Akad. Sc.,
Vol. 10, p. 217 (1875); Druce in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 220 (1876); Méschler in Verh.
Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 315 (1876); Aurivillius in Sv. Akad. Handl. (2), Vol. 19,
1) Metamandana uov. nom. pro .Vetumorpha. Der Gattungsname Metamorpha kann infolge der Typus-Bestimmung durch Scudder (AZ. sw/-
#ttia ; Historical Sketch, 1875, in Proc. Amer. Akad. Sc. Vol. 10, p. 217) hier keine Anwendung finden und mag durch J/etamandana ersetzt sein. —
Internat. Nomenklaturregeln 1905, Art. 30.
FAM. NYMPHALID/® 7
p- 175 (1882); W. Miiller in Zool. Jahrb., Vol. 1, p. 433 (1886); Staudinger (u. Schatz), Exot.
Schmeit., Vol. 1, p. 86 (1887); Hahnel in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 3, p. 212 (1890).
(Cit. omn. spec. : C. dido).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, Stirn kurz behaart, Augen eiférmig gewélbt, nackt.
Palpen (Taf. |, Fig. 2) den Kopf tiberragend, nur bis zu 2/3 des Mittelgliedes der Stirn anliegend,
dann nach vorn geneigt und die Innenseite in halber Drehung léffelartig nach oben gewendet, an
der Innenseite sparlich, dorsal starker behaart, an der Ventralseite lange abstehende Grannenhaare;
Basalglied kurz, nierenférmig, ventral die Haare struppig abstehend, Basalfleck erhaben, etwa bohnen-
férmig, von 1/3 der Lange des Palpengliedes, nahe an der dorsalen Kante desselben, dicht mit feinen,
nach oben gerichteten spitzen Kegelgebilden besetzt, hellgelb chitinisiert, die Umgebung, namentlich
unten, sehr diinn behaart. Mittelglied tiber dreimal so lang als das Basalglied, distal fast eiférmig
erweitert, bei der Abwendung von der Stirn dorsal mit einem starken Haarbiischel und biischelartiger
Verstarkung der Haare an der entgegengesetzten Seite. die Haare mit Schuppen durchsetzt und eben-
falls verstarkt; Endglied kurz, spitz, pfriemférmig, dicht und ganz anliegend behaart und beschuppt,
auffallig abgesetzt. Antennen diinn, von 2/5 der Lange des Vorderfliigels, distal stark kolbig verdickt,
der Schaft dorsal sparlich beschuppt, schwach segmentiert. Thorax und Abdomen ziemlich schlank;
ersterer diinn und kurz, am hinteren Ende starker und fast wollig behaart, Abdomen mit glatt anliegenden,
kurzen Haaren und Schuppen bekleidet. bedeutend kiirzer als der Hinterfliigel. Vorderbein des &
(Taf. |, Fig. 3a) mit eingliedrigem, leicht gekriimmtem, ziemlich stumpf endigendem Tarsus, dieser
etwa von halber Lange der Tibia, sparlich, distal starker und langer behaart und am Ende mit zwei
dornartigen Spitzen besetzt. Vorderbein des Q (Taf. 1, Fig. 3b) mit fiinfgliedrigem Tarsus, die
Glieder stark abgesetzt, das proximale langer als die vier Endglieder, alle mit je zwei starken Dornen
besetzt, das Endglied in eine abgesetzte Spitze auslaufend. Behaarung diinn, distal linger und etwas
dichter.
Vorderfliigel schlank, stumpfwinklig dreieckig, Vorderrand proximal fast gerade, distal leicht
gekrimmt, Apex spitz abgerundet. Distalrand zuriicktretend, schwach konkav, leicht gewellt; Hinter-
winkel stumpf geeckt, Hinterrand stark konkav, von etwa 6/5 der Lange des Distalrandes. Costalis
gestreckt, distal kurz nach der Mitte des Vorderrandes in diesen auslaufend. Subcostalis finfastig;
SCi in massiger Entfernung proximal vom Zellende, SC 2 kurz nach demselben abgezweigt, lang in
den Vorderrand einlaufend; SC 3 in der Mitte zwischen SC 2 und der Gabelung von SC 4 und 5
entspringend, in den Apex miindend; von den letzten beiden Aesten der vordere in die apicale Rundung,
der hintere vorn in den Distalrand einlaufend. Zelle lang und schmal, in der Mittellinie gemessen
fast gleich der halben Fliigellange. VDC verkiimmert, MDC spitzwinklig gegen die Fliigelwurzel
gerichtet, HDC ‘in entgegengesetzter Richtung gewinkelt oder scharf gekriimmt, der Winkel also in
die Zelle einspringend, der hintere Schenkel trifft die Mediana in schrager Richtung vor dem Buge des
VM. Die Radiales schwach gekriimmt, annahernd parallel, die Medianiste in etwa gleichem Abstande
voneinander, ziemlich gerade und parallel. Mediana nahe der Wurzel hinten mit einem distalwarts
gerichteten kleinen Sporn. Submediana stark S-formig, dem Hinterrande folgend, gebogen. Hinterfliigel
fast dreieckig, mit konvex gekriimmten Seiten. Vorderrand mA4ssig gekriimmt, Apex ziemlich spitz,
Distalrand stark konvex, gewellt; Hinterwinkel fast rechtwinklig, Hinterrand ziemlich gerade, proximal
wenig gelappt. Praecostalis einfach, schrag aufsteigend, distal wurzelwarts gekriimmt. Costalis stark
gekriimmt, in den Apex auslaufend. Subcostalis nahe der Fliigelwurzel abgezweigt, anfangs gerade,
nach Entsendung der VDC nach vorn gekriimmt, kurz hinter dem Apex in den Distalrand miindend.
VDC kurz, schrag distalwarts gestellt, ohne merkliche Veranderung der Richtung in die gestreckte
und distal leicht gekriimmte VR iibergehend, MDC schrag abfallend, distal gekriimmt und von der
HR fortgesetzt; diese proximal gerade, dann leicht gekriimmt und mit VR etwas divergierend. H DC
8 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
fehlt. Die Mediandste normal, S M gestreckt in den Hinterwinkel, H A lang und ziemlich gerade unweit
des Hinterwinkels in einen gewinkelten Absatz des Hinterrandes einlaufend.
Die beiden Geschlechter gleich gefarbt und gezeichnet, Fliigel oben griin mit schwarzer Einfas-
sung, die vorderen mit ebensolcher Schragbinde, die hinteren mit griinen Flecken im schwarzen
Distalteil; G’ ohne bemerkenswerte sexuelle Merkmale, beim @ die Fliigelform etwas breiter. Ueber
die tertidren Geschlechtsauszeichnungen (Duftorgane) vergl. allgemeine Charaktere der Subfamilie
(Seite 4).
Typus der Gattung : Papilio dido L. (Kirby, 1894).
Schema des Fliigelgedders : Taf. |, Fig. |.
Geographische Verbreitung der Formen. — Die einzige, in mehrere Rassen geteilte Art
dieser Gattung lebt in Siid- und Zentral-Amerika. Ihr Fluggebiet erstreckt sich von Uruguay bis
Guayana, einschliesslich des Gebietes am oberen Amazonenstrom (Siid-Peru, Rio Negro), und von
Colombia bis Nicaragua und Honduras; das Vorkommen auf den Antillen ist zweifelhaft (Lucas, 1857).
VERZEICHNIS DER FORMEN
1. Metamandana dido Linné.
a. Metamandana dido dido Linné.
— Merian, Insect. Surin., t. 3 (1715).
— Seba, Thesaurus, Vol. 4, t. 4 f. 13, 14 (1765).
Papilio dido, Linné, Amoen. Acad., Vol. 6, p. 408, n° 74 (1763).
Papilio dido, Clerck, Icon. Ins., t. 30 f. 2 (1764).
Papilio (Nymphalis) dido, Linné, Syst. Nat. (12), p. 782, n° 192 (1767).
Papilio dido, Cramer, Pap. Exot., Vol. 3, p.6; p. 174, t. 196 f. EF (1779).
Papilio dido, Fabricius, Syst. Ent., p. 510, n® 285 (1775); Ent. syst., Vol. 3 (1), p. 57, n° 177 (1793).
Nereis viridis dido, Hiibner, Exot. Schmett., Vol. 1, t. 17 (1806-19).
Philaetria dido, Billberg, Enum. Insect., p. 77 (1820).
Metamorpha dido, Hubner, Verz. Schmett,, p. 43, n° 383 (1816); Exot. Schmett., Vol. 2, Index (182r).
Cethosia dido, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth., Zool., Vol. 9, p. 246, n® 8 (1819).
Colaenis dido, C. Felder in Nova Acta Leop. Car. Akad., Vol. 18, n° 3, p. 7 (1861).
Cethosia dido, Lucas, Lep. Exot., p. 104, t. 34 f. 1 (1835).
Cethosia dido, Duncan, Foreign Butt., p. 145, t. 13 (1837).
Agraulis dido, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep., Vol. 1, p. 65 (1844).
Colaenis dido, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep., Vol. 1, p. 149, t. 20 f. 2 (1848).
Colaents dido, Chenu u. Lucas in Encycl. Papill., Vol. 1, p. 83, t. 183 (1853).
Agraulis dido, Erichson in Schomburgk, Reis. Guiana, Vol. 3, p. 596 (1848).
Colaents dido, Lucas in Sagra, Hist. de Cuba, Ins., p. 528 /1857),
Colaenis dido, C, u. R. Felder in Wien. Ent. Mon., Vol. 6, p. 110 (1862).
Colaenis dido, Bates in Journ. Ent., Vol. 2, p. 186 (1864).
Colaenis dido, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 119, n° 4 (1869).
Colaenis dido, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 147 (part.) (1871).
Colaenis dido, Moschler in Verh. Zool,-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 315 (1876).
Metamorpha dido, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1, p. 166 (part.) (1881) ; Vol. 2, p. 670 (1901).
Colaents dido, Aurivillius in Sv. Akad. Handl. (2), Vol. 19, p. 175 (1881).
Colaenis dido, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86 (part., non t. 34) (1885).
Metamorpha dido, Schatz (Staudinger u.), Exot. Schmett., Vol. 2, p. 113 (1887).
Colaenis dido, Hahnel in Deutsche Ent. Zeitschr. Lep. (Iris), Vol. 3, p. 212, 276, 312 (1890).
Metamorpha dido, Kirby, Handb. Lep., Vol. 1, p. 47 (part.), t. 9 (1894).
Papilio (Heliconius) nigro-marginatus. Goeze, Ent. Beytr., Vol. 3 (1), p. 122 (1779).
Guayana, Brasilien nordlich des Amazonenstromes, Para, Siid-Peru, Venezuela (?), Panama, Nicaragua,
Honduras, Cuba(?).
6. Metamandana dido ostara Rober (subsp. dub.).
Metamorpha dido. var. ostara, Rober in Soc. Ent., Vol. 20, p. 177 (1906).
Metamorpha dido, Weymer in Reiss u. Stiibel, Reise Stid-Amer., Lep., p. 27, 33 (1890).
Colaenis dido, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86 (part.) (1885).
Colombia.
FAM. NYMPHALIDZ 9
c. Metamandana dido wernickei Rober.
Metamorpha wernickei, Rober in Soc. Ent., Vol. 20, p. 177 (1906).
Cethosia dido, Latreille in Cuvier, Regne Anim., ed. Masson, Ins., p. 243, t. 134 f. 3 (? 1836).
Colaenis dido, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86 (part.), t. 34 (1885).
Colaenis dido, W. Miller in Zool. Jahrb., Vol. 1, p. 433 (Biol.) (1886).
Suidliches und mittleres Brasilien : Santa Catharina, Espirito Santo. Bahia, am unteren Amazonen-
strom (?), Uruguay (Montevideo, no 1670, i. c. Mus. Berolin.).
2. GENUS COLAENIS, HUBNER
Colaenis. Hiibner, Verz. Schmett., p. 31 (part.) (spec. : C. julia, delila) (1816); idem, Exot. Schmett.,
Vol. 2, Index zu Vol. 1 (spec. : C. julia) (1821); Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen.
Diurn. Lep., p. 148 (part. : sect. I) (1848); Chenu u. Lucas in Encycl. Papill., p. 81 (part.)
(1853); C. Felder in Nova Acta Leop. Car. Akad., Vol. 18 n° 3, p. 2 (part.) (1861); Bates in
Journ. Ent , Vol. 2, p. 186 (1864); Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb., Vol. 18, p. 126;
Vol. 19, p. 105 (part.) (1865); Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 118 (1869); Kirby, Cat. diurn.
Lep., p.147 (part.) (1871); Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc., Vol. 10, p. 146 n° 280 (part.)(1875) ;
Druce in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 220 (1876); Méschler in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26,
p. 315 (1876); F. Miller in Kosmos, Vol. 1, p. 393 (1877); Edwards, in Trans. Amer. Ent.
Soc., Vol. 6, p. 19 (1877); Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer., Rhop., Vol. 1, p. 167 (1881);
Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86; Vol. 2, p. 114 (1887); Hahnel in Deutsche
Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 3, p. 157, 200, 240 (1890); Kirby, Handb. Lep., Vol. 1, p. 47 (1894);
Reuter in Acta Soc. Sc. Fenn., Vol. 22, p. 50 (1896); Kirby in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett.,
Neue Ausg., p. 14 (1901); Holland, Butterfl. Book, p 94 (1901); Dyar in Bull. U. S. N. Mus.,
N° 52, p. 12 (1902).
Nymphalis (Subgen.) (part.). Linné, Syst. Nat. (10), p. 478 (part.) (spec : Papilio (N.) phaetusa) (1758).
Dryas. Hiibner, Exot. Schmett., Vol. 1, t. 43 (spec. : D. phalerata julia) (1806-19).
Cetosia (part.). Latreille, Gen. Crust. Ins., Vol. 4, p. 200(Sectio 1 part., spec. : C. alczonea pro julia) (1809).
Pantoporia. Hiibner, Verz. Schmett.. p. 44 n° 385 (spec. : P phaerusa) (1816).
Cethosia (part.). Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 246 (181g); Ménétriés in Nouv.
Mém. Soc. Imp. Nat. Moscou, Vol. 7, p. 192 (spec. : C. alctonea = julia) (1829); Lucas, Lep.
Exot., p. 102 (part.) (1835).
Philaetria (part.). Billberg (Dalman M.S.), Enum. Insect., p.77 (spec. : P. phacrusa, P, julia) (1820).
Agraulis (part.). Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep., p. 65 (1844); Erichson in Schomburgk, Reis.
Guiana, Vol. 3, p. 596 (spec. : A. phaerusa, julia) (1848).
Dione. Butler in Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 12, p. 227 (spec. : D. telesiphe) (1873).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, Stirn kurz behaart; Augen gross, eiformig gewolbt,
nackt. Palpen (Taf. |, Fig. 5) den Kopf iiberragend, aber nur bis zu 2/3 des Mittelgliedes der Stirn
anliegend, dann nach vorn aufsteigend, sparlich mit feinen Haaren bekleidet; Behaarung ventral und
dorsal starker, ahnlich wie bei Metamandana am Mittelgliede dorsal biischelartig verstarkt, die Ventral-
seite ausserdem mit langeren, starren, abstehenden Grannenhaaren besetzt. Basalglied ziemlich kurz,
aufwarts gebogen, an der Wurzel ventral die Haare langer und struppig abstehend; Basalfleck sehr
klein, langlich, kaum 1/4 der Lange des Gliedes, mit kurzen spitzen, nach vorn und oben geneigten
Kegelgebilden nicht allzu dicht besetzt, die Umgebung wie bei der vorigen Gattung nur sehr diinn
behaart. Mittelglied bedeutend linger, gegen das Ende nur wenig verbreitert, dies wieder etwas
verjingt, Behaarung dort mit Schuppen durchsetzt, Endglied kurz, zapfenformig, spitz, wenig merklich
abgesetzt, dicht beschuppt und behaart. Antennen diinn, von 2/3 bis 1/2 der Lange des Vorderfliigels,
IO LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
distal kolbig verdickt, die Segmente schwach abgesetzt, Schaft dorsal sparlich beschuppt. Thorax und
Abdomen ziemlich schlank, die Behaarung an ersterem schwach, hinten stérker, am Abdomen dicht,
glatt anliegend. Das letztere kiirzer als der Hinterfltigel. Vorderbein des go (Taf. |, Fig. 6a) mit
eingliedrigem, ganz schwach gekriimmtem, spitz auslaufendem Tarsus, der am Ende einige starke
Borsten tragt, sonst sparlich behaart und nur wenig kiirzer als die Tibia ist. Vorderbein des Q (Taf. I,
Fig. 6b) mit fiinfgliedrigem Tarsus; Proximalglied distal stark verdickt, doppelt so lang wie die
iibrigen vier Glieder, diese ventral je mit zwei starken Borsten bewehrt, Endglied dorsal in eine
kurze, abgesetzte, gerade Spitze auslaufend. Mittel- und Hinterbeine beider Geschlechter am Endglied
des fiinfgliedrigen Tarsus mit wohl ausgebildetem Ballen (Pulvillus) und starken Klauen, die seitlich
mit Anhangen versehen sind (Taf. |, Fig. 7).
Vorderfliigel entweder am Apex abgerundet (Sectio 1: Taf. |, Fig. 4a) oder geeckt (Sectio II :
Taf. |, Fig. 4b). In ersterem Falle der Fliigel schmal und schlank, stumpfwinklig dreieckig.
Vorderrand wenig gekriimmt, Distalrand schwach konkav, nur unwesentlich kiirzer als der leicht konvex
gebogene Hinterrand; oder der Fliigel breiter, dann der Vorderrand verkiirzt, starker gekriimmt, der
Hinterwinkel fast rechteckig und der Hinterrand linger als der Distalrand. Bei geecktem Apex dieser
schrag abgeschnitten, Distalrand in der Gegend des vorderen Medianastes tief konkav eingebuchtet,
Hinterwinkel rechteckig, Hinterrand fast gerade, von etwa 5/3 der Lange des Distalrandes. Costalis stets
sehr lang, gestreckt, ungefahr am zweiten Drittel des Vorderrandes in diesen einlaufend, proximal der
Subcostalis eng anliegend. SC fiinfastig, alle Aeste frei; Stellung des ersten Astes etwas schwankend, er
ist gewohnlich in ganz kurzem, seltener in etwas erweitertem Abstande proximal vom Zellende oder
unmittelbar an demselben abgezweigt, bei einer Art (C. phaetusa) riickt der Ursprung nicht selten etwas
in distaler Richtung weiter, liegt also distal vom Zellende; SC 2 3 und 4 folgen in gleichmassigen
Abstanden, SC 2 in den Vorderrand, SC 3 in den Anfang der apicalen Rundung oder in die vordere
Apicalecke, SC 4 in den Apex und SC 5 kurz hinter ihm in das Ende der apicalen Rundung oder in
die Mitte der apicalen Abschragung einlaufend: die letzten beiden Aeste bilden eine missig lange Gabel.
Vordere Discocellularis fehlend oder zu einem ganz kurzen Steg reduziert. MDC schrig gegen die
Fligelwurzel gestellt, H DC in spitzem Winkel in distaler Richtung vortretend; der vordere Schenkel
dieses Winkels oft sehr kurz, zuweilen ganz fehlend, dann HR von dem durch MDC und HDC
gebildeten, in die Zelle einspringenden Winkel ausgehend; HDC trifft die Mediana im Anfang des
Buges von VM und an der Spitze des Winkels der Discocellulares ist mitupter ein kleiner, in die Zelle
riicklaufender Aderansatz bemerkbar. Die Radiales annahernd parallel, proximal gestreckt, dann leicht
gebogen. Medianidste in annahernd gleichem Abstande unter sich, fast parallel, VM bisweilen starker
nach vorn gekriimmt, die beiden anderen Aeste schrég nach hinten gerichtet; in diesem Falle (Sectio II,
Taf. 1, Fig. 4b) miindet H M in den Hinterwinkel und S M eine missige Strecke proximal von ihm in
den Hinterand. SM sonst leicht S-férmig geschweift, dem Hinterrande folgend und in den Hinterwinkel
einmiindend. — Hinterfliigel im Gesamtumriss etwa dreieckig mit konvex gekriimmten Seiten oder breit
eifoérmig (C. phaetusa). Vorderrand leicht gebogen (Sectio I, Taf. 1, Fig. 4a) oder gerade abgeschnit-
ten (Sectio II, Taf. |, Fig. 4b); in diesem Falle der Apex ziemlich eckig, sonst mehr oder weniger
abgerundet, Distalrand gewellt, konvex gerundet oder fast gerade (Sectio II, Taf. |, Fig. 4b), Hinter-
winkel fast rechteckig abgesetzt, Hinterrand proximal nur unwesentlich gelappt. Praecostalis einfach,
wurzelwarts gekriimmt. Costalis unweit des Vorderrandes, diesem folgend, und in den Apex mitindend.
SC nahe der Fliigelwurzel abgezweigt, zuerst gestreckt, dann, nach Entsendung der VDC, etwas
nach vorn aufsteigend und leicht gekriimmt in den Distalrand einlaufend. V DC kurz. schrag in distaler
Richtung abgezweigt, MDC steiler nach hinten abfallend, gekriimmt in H R tibergehend. H DC fehlt,
Zelle offen. Die Medianidste normal, SM leicht gekriimmt, in den Hinterwinkel miindend; HA lang,
unweit des Hinterrandes gelegen, nahe dem Hinterwinkel jenen treffend.
FAM. NYMPHALIDZ® II
Wie in anderen Fallen der Variabilitat morphologischer Eigenschaften, finden sich auch hier
anormale Bildungen im Geidder. Abgesehen von der schwankenden Stellung des ersten Subcostalastes
im Vorderfliigel oder, was dasselbe Resultat bewirkt. der verschiedenen
Abzweigung der Discocellulares von der Subcostalis, sei ein anscheinend PC
ausserst seltener Fall der Gabelung der Costalis des Hinterfliigels bei
einem of C. iulia aus Santa Catharina (n° 510 1. c. Stichel) erwahnt. Nahe
der Mitte der Ader (Fig. 1) zweigt sich, in spitzem Winkel schrag nach
vorn aufsteigend. ein kriftiger Aderzweig ab, welcher auf der einen,
dargestellten, Seite etwas gekriimmt, auf der anderen fast gerade verliuft
und unweit des Vorderrandes endet; im tbrigen ist das Geader beider
Fliigel des Stiickes normal. In anderen nicht seltenen Fallen sind an Fi8-1.—Anormale Aderbildung
der Stelle des Zellschlusses im Huinterfliigel vorn am Buge der HR ete een aa
und hinten nahe der Abzweigung von MM zapfenférmige Rudimente der H DC nachweisbar.
Falter von vorwiegend brauner, gelblicher oder rétlicher Fliigeloberseite mit schwarzer oder
schwarzbrauner Einfassung, Querbinde und Submedianstreif des Vorderfliigels und zuweilen dunkler
Mittelbinde des Hinterfliigels. Der Typus der Gattung vermége seines schlanken Fliigelschnittes und
des silberweiss glanzenden Costalfeldes des Hinterfliigels beim & habituell den Vertretern der Gattung
Heliconius ahnlich.
Typus der Gattung : Papilio iulia Fabr. (Scudder, 1875).
Schema des Fliigelgeiders : Taf. 4, Fig. 4a, b.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Heimat der Arten dieser Gattung ist Siid-
und Zentral-Amerika, die Antillen und Siidstaaten von Nord-Amerika. Als siidlichste Grenze des Verbrei-
tungsgebietes ist Peru, Argentinien und Paraguay, im Norden Texas und Florida bekannt.
VERZEICHNIS DER ARTEN
Sectio |. APOTORNEUTHES
Vorderfliigel am Apex rundlich, S M miindet in den Hinterwinkel. Hinterfliigel am
Vorderrande konvex geschnitten.
1. Colaenis iulia Fabricius.
a, Colaenis iulia iulia Fabricius.
Papilio iulia, Fabricius, Syst. Ent., p. 509, n° 281 (1875); Spec. Ins., Vol. 2, p. 99, n° 435 (1781); Mant. Ins.,
Vol. 2, p. 54, n° 529 (1787); Ent. syst., Vol. 3 (1), p. 180, n° 558 (1793).
Dryas phalerata julia, Hubner, Exot. Schmett., Vol. 1, t. 43 (1806-19).
Cethosta iulia, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth., Vol. 9, p. 244 (1819).
Colaenis julia, Hiibner, Verz. Schmett., p. 32, n’ 259 (1816) ; Exot. Schmett., Vol. 2, Index (1821).
Philaethria julia, Billberg, Enum. Insect., p. 77 (1820).
Agraulis julia, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep., p. 65 (1844).
Agraulis julia, Exichson in Schomburgk, Reis. Guiana, p. 596 (1848).
Colaenis julia, Butler. Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 118 (1869).
Colaenis julia, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., p. 86 (part.), t. 34 (1885).
Colaenis julia, WV. Miller in Zool. Jahrb., Vol. 1, p. 12 (Biol.) (1886).
Dione julia, Hahnel in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 3, p. 309 (1890).
Colaenis julia, Michael, ibidem, Vol. 7, p. 229 (1895).
Pafilio alcionea, Cramer, Pap. Exot., Vol. 3, p. 38; 173, t. 215, f. A, F, G (1782).
Papilio alcyonea, Herbst (Jablonsky u.) Naturs. Schmett., Vol 4, p. 91, t. 67, f. 5-7 (1790).
Cetosia alcionea, Latreille, Gen. Crust. Ins., Vol. 4, p. 200 (1809).
Papilio alcionea, Sepp, Surin. Vlind., t. 5 (Biol.) (1828-36).
12 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Cethosia alcionea, Ménétriés in Nouv. Mém. Soc. Imp. Nat. Moscou, Vol. 7, p. 192 (1829).
Papilio luteus, Goeze, Ent. Beytr.. Vol. 3 (1), p. 119, n. 45 (1779).
Paraguay, Brasilien, Guayana, Colombia, Peru, ? Venezuela.
6. Colaenis iulia titio Stichel, nov. subsp. 1).
Bolivia.
c. Colaensis iulia delila Fabricius 2).
Papilio delila, Fabricius, Syst. Ent., p. 510, n. 284 (1775); Spec. Ins., Vol. 2, p. 100, n. 439 (1781) ; Mant. Ins.,
Vol. 2, p. 54, n. 534 (1787) ; Ent. syst., Vol. 3 (1), p. 57, n. 176 (1793).
Colaensis delila, Hiibner, Verz. Schmett., p. 32, n. 260 (part.) (1816).
? Cethosia delila, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 244 (1819).
Agraulis delila, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep., p. 65 (1844).
Colaenis delila, Butler, Cat diurn. Lep. Fabr., p. 118 (1869).
Colaenis delila, Godman & Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1, p. 168 (1881) ; Vol. 2, p. 670 (1901).
Colaensis delila (forma juliae ?), Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86 (1887).
Colaenis delila, Moschler in Abh. Senckenb. Ges., Vol. 16, p. 95 (1889).
? Colaenis delila, Godman u. Salvin in Whymper, Travels. Great Andes, Suppl., p. 100 (1892).
Colaenis julia var. delila, Dyar in Bull. U. S. Nat. Mus. n. 52, p. 12 (1902).
Colaenis julia, Butler u. Druce in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 350 (1875).
Colaenis julia, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86 (non f, t. 34) (1885).
Colaents julia, Moschler in Abh. Senckenb. Ges., Vol. 14, p. 27 (1887).
Colaents julia, Godman u. Salvin in Proc, Zool. Soc. Lond., p. 514 (1896).
Colaents julia, Kaye in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 169 (1904).
Jamaica, Haiti, Puerto Rico, Kleine Antillen (St. Thomas, Dominica, St. Vincent, St. Lucia), Trinidad,
Venezuela, Nord]. Colombia, Zentral-America, Texas, Florida, ? Guayana, ? Peru (Godm.-Salv., 1892).
x. Forma moderata, nov. form. Stichel 3).
Colaenis delila, Holland, Butterfl. Book, p. 95 (part.), t. 8 f. 4 (1901).
Neben der Haupttform.
d, Golaenis iulia cillene Cramer. — Taf. 2, Fig. | (Q).
Papilio cillene, Cramer, Pap. Exot., Vol. 3, p. 38 ; 174, t. 215, f. D, E (1782).
Papilio cillene, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett., Vol. 4, p. 93, t. 67, f. 8, 9 (1790).
Colaents cillene, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer, Lep. Rhop., Vol. 1, p. 168 (1881).
Cethosta delila aberr., Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 244 (1819).
Colaenis delila, Gundlach, Contrib. Ent. Cubana, Vol. 1, p. 55 (part.) (1881).
Colaenis delila, Dewitz in Nova Acta Leop. Car. Akad., Vol. 44, p. 248, t. 1 f. 6, 6a (Biol.) (1883).
Colaenis delila (2 form. loc, juliae), Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86 (part.) (1885).
Cuba, ? Niederland.-Guayana.
&. Forma nudeola Stichel, nov. form. 4).
Cuba.
1) C. ula titio. — Subspecies supra coccineo-micans, praecipue in partibus proximalibus alarum omnium, signaturis ut in subspecie typica. —
Meist etwas kleiner als typische Vertreter der Art aus Brasilien, in beiden Geschlechtern, vorzugsweise aber beim <, die Fliigel von der Wurzel aus feuer-
rot iibergossen. Beim Q tritt dies weniger auffallig hervor, seine Grundfarbe ist aber wesentlich feuriger als bei 9 O anderer Herkunft. — Vorderfligel-
lange O 37-39, Gh 38 mm.; 2 5, r Q, typ. N® 518-21 i. c. Stichel. Bolivia : Yungas de la Paz; Santa Cruz (sofern die Bezettelung des in einer Naturalien-
handlung erworbenen Stiickes meiner Sammlung richtig ist). — Es hat den Anschein, als ob in Bolivien auch Exemplare heimisch sind, welche von der
typischen Form weniger abweichen; diese sind dann als Riickschlage zur Stammform anzusehen, ober wir haben es mit Zeit- oder H6henformen zu tuen.
2) Bei der weiteren Aufteilung der Art folgen wir der Ansicht von Godman u. Salvin (1. c, 1881). In der Voraussetzung, dass die Type des Paptlio
@elila Fab.von Butler (1. c.1869) richtig identifiziert ist,also mit Stiicken aus Jamaica iibereinstimmt, erscheint es verfehlt, Pag. cz#//ene Cramer, obgleich von
Surinam angegeben, als Synonym zu behandeln. Das Bild dieser Form zeigt eine getreue und unverkennbare Wiedergabe der auf Cuba, namentlich im
6stlichen Cuba, fliegenden Rasse,wahrend sich de/¢/a in nur geringen und unbestandigen Modificationen iiber die anderen Antillen und das umschliessende
Festland, vielleicht auch noch an der Kiiste von Guayana entlang, verbreitet. Es ist dabei nicht ausgeschlossen, dass sich auf dieser oder jener Insel eine
weitere konstante Lokalform ausgebildet hat. Godman u. Salvin vermuten dies von Haiti, indessen sind die Charaktere einiger uns aus Port au Prince
vorliegenden Stiicke (Mus. Berolin, N° 1663) so unbedeutend abweichend, dass hier die Einfiihrung eines neuen Namens nicht ratsam erscheint. Auffalliger
weichen zwei 9 9 aus St-Thomas (Mus. Berol.) vermége verbreiterter Schwarzfarbung im Apex und fehlenden Submedianstreifes des Vorderfligels und
ein Gaus Puerto Rico (Mus. Berol. N° 21050) mit reicher entwickelter schwarzer Bestaubung, distal an der Costa des Vorderfliigels, ab; diese Merkmale
mogen aber individueller Natur sein.
3) C. tulia delila forma moderata. — Alis supra fumoso-ochraceis, concoloribus; venis pro parte, apice limboque distali angustissime fuscis. —
Oberseite triibe ockerfarben, leicht rétlich, wie bei der Hauptform, die Zeichnungen der Oberseite fehlend, bis auf einen schmalen schwarzen Saum am
Distalrande der Fliigel und etwas dunkle Besiumung am Vorderrande und Apex. — 1 G, typ.i c. Stichel, N° 525, Honduras.
4) C. iulia cillene forma xudeola. — Alis supra splendido-ochraceis, concoloribus; venis lineaque ad marginem distalem nigris. — Eine der Forma
moderata analoge Bildung der Cuba-Rasse, bei der aut der Oberseite alle Zeichnungen fehlen, nur die Adern sind fein schwarz bestaubt, am Distalrande
der Fligel zieht eine feine schwarzliche Linie entlang. Diese Aberration unterscheidet sich von moderata auffillig durch die der Subspecies ci//ene eigen-
timliche goldig schimmernde Grundfarbe. — 1 G, typ. in Mus. Berol. N* 1662. — Cuba.
FAM. NYMPHALIDASs 13
2. Colaenis phaetusa Linné.
— Roesel, Insekten-Belust,, Vol. 4, p. 24. t. 2 f. 1 (1756).
— Seba, Thesaurus, Vol. 4, t. 28 f. 17, 18 (1765).
Papilio (Nymphalis) phaetusa, Linné, Syst. Nat. (10), p. 478, n° 123 (1758).
Papilio phaetusa, Cramer, Pap. Exot., Vol. 2, p. 50, t. 130 f. B, C (1779).
Colaenis phaetusa, C. u. R. Felder, Wien. Ent. Mon., Vol. 6, p. 109 (1862).
Colaenis phaetusa, Bates in Proc. Zool. Soc. Lond., p. ro (1863).
Colaents phaetusa, Aurivillius in Sv. Akad. Handl. (2), Vol. 19, p. 95 (1882).
Colaenis phaeiusa, Weymer in Reiss u. Stiibel, Reisen Stid-Amer. Lep., p. 33 (1890).
Papilio phaerusa, Linné, Mus. Lud. Ulr., p. 293 (1764) ; syst. Nat. (12), Vol. 1 (2), p. 780, n° 180 (1767).
? Papilio phaezrusa, Fabricius, Syst. Ent., p. 509, n° 280 (1775); Ent. syst., Vol. 3 (1), p. 134, n° 413 (1793).
Papilio phaerusus, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett., Vol. 6, p. So, t. 136 f. 3, 4 (als phaetusus) (1793).
Pantoporia phaerusa, Hubner, Verz. Schmett., p. 44, n° 385 (1816).
Cethosta phaerusa, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth., Vol. 9, p. 246 (1819).
Philaetria phaerusa, Billberg, Enum. Insect., p. 77 (1820).
Agraulis pherusa, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep., p. 65 (1844).
Agraulis phaerusa, Erichson in Schomburgk, Reis. Guiana, Vol. 3, p. 596 (1848).
Colaenis phaerusa, Chenu u. Lucas in Encycl. Papill., Vol. 1, p. 82, f. 181 (1853).
Colaents phaerusa, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 118 (1869).
Colaents phaerusa, Burmeister, Descr. phys. Rep. Argent., Lep., p. 136 (1878).
Colaents phaerusa, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer., Rhop., Vol. 1, p. 167 (1881); Vol. 2, p. 670 (1901).
Colaenis phaerusa, Hahnel in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 3, p. 202 (1890).
Colaenis phaerusa, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer., Rhop., Vol. 1, p. 167 (part.) (1881).
Colaenis phaerusa, Therese von Bayern in Berl. Ent. Zeit., Vol. 46, p. 254 (1901).
Colaenis phaerusa, Kaye in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 169 (1904).
Papilio ater, Goeze, Ent. Beytr., Vol. 3 (1), p. 122, n° 65 (1779).
Argentinien, Paraguay, Peru, Brasilien, Guayana, Venezuela, Trinidad, Colombia, Zentral-Amerika,
Mexico.
%. Forma stupenda Stichel, nov. form.1).
Panama.
. Forma deleta Stichel, nov. form. 2).
Paraguay, Brasilien (Bahia), Colombia, Niederland.-Guayana.
“@
~. Forma lutulenta Stichel, nov. form. 3).
Paraguay, Niederland.-Guayana.
Sectio Il. AX OTOMEMATI
Vorderfliigel am Apex geeckt, Submediana miindet in den Hinterrand.
Vorderrand des Hinterfliigels gerade.
3. Colaenis euchroia Doubleday.
a. Colaenis euchroia euchroia Doubleday.
Colaznis euchyoia, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep., Vol. 1, t. 20f. 3 (1847); p. 149 (1848).
Colaenis euchrota, Chenu u. Lucas in Encycl. Papill., p. 82, f. 182 (1853).
1) C. phaetusa forma stvpenda. — VDiffert a forma principali alis supra colore fundali vivacissime lateritio, strigis omnibus, specialiter quoque
alarom posticarum striga costali, aterrimis. — Durch lebhaft ziegelrote Grundfarbe und tiefschwarz gefirbte, volle Bindenzeichnung von der gewohn_
lichen Form auffallig abweichend. Es ist nicht ausgeschlossen, dass dieser Form ein subspecifischer Wert zuerkannt werden darf, da auch ein vorliegendes
© derselben Herkunit bedeutend lebhafter gefarbt und scharfer gezeichnet ist, als Tiere aus anderen Gegenden. Da aber die Art im Ubrigen, unabhangig
yon der Lokalitat, nicht unbedeutend variiert, auch aus noérdlichen Teilen Zentralamerikas Stiicke vorliegen, die ohne besondere Trennungsmerkmale
sind, kann die « Varietat » yorerst nur als Zustandsform betrachtet werden. — Typ. 1 @. N° 533, coll. Stichel; Panama (Bugaba).
2) C. phaetusa forma defeta. Alarum anticarum striga submediana fusca, qua adest in forma typica, majore ex parte extincta. — Als Hauptform
ist nach der Originaldiagnose Linnés diejenige anzusehen, welche auf dem Vorderfliigel drei gut ausgebildete Langsbinden tragt. Diese Binden sind mit-
unter ruckgebildet oder verwaschen, namentlich die langs der Submediana liegende. Stiicke, bei welchen diese Submedianbinde ganz verloschen ist, machen
wie die yorige Form, den Eindruck einer Lokal- oder Zeitform; da sich die Erscheinung indessen in den verschiedensten Gegenden des Verbreitungs-
gebietes wiederholt kann die Bildung auch hier nur als Zustandsform angesehen werden, die einer Benennung wert erscheint. Typ. 1 G, N° 532, 1. c.
Stiche]. — Paraguay.
3) ©. phactus: forma OD lutul-nta. Supra sordido-ochracea, strigis fasciisque omnibus dilutis. — Eine Form, welche nicht eben selten und unab-
hangig von der Lokalitat im weiblichen Geschlecht der Art vorkommt. Die Oberseite der Fliigel ist schmutzig ockerfarben, alle dunklen Binden verwa-
schen und schattenhaft mit ungewissen Conturen aufgetragen. Typ. 1 O, N° 532, i. c. Stichel. — Paraguay.
14 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Colaenis euchroia, Weymer in Reiss u. Sttbel, Reisen Sid-Am. Lep., p. 16 n° 12; p. 37 n° 11; p. 54 no 34 (1890).
Colaenits euchroia, Therese von Bayern in Berl. Ent. Zeit., Vol. 46, p. 254 (1901).
Colombia, Ecuador; Venezuela (?)
b, Golaenis euchroia mellosa Stichel, nov. subsp. 1). — Taf. 2, Fig. 2.
Ecuador. Venezuela (?).
4. GColaenis telesiphe Hewitson.
a. Colaenis telesiphe telesiphe Hewitson.
Colaents telesiphe, Hewitson in Trans. Ent. Soc Lond. (3), Vol. 5, p. 564 (1867).
Colaenis telesiphe, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond , p. 220 (1876).
Colaents telesiphe, Weymer in Reiss u. Stiibel, Reisen Siid-Am. Lep., p. 62 n° 49; p. 73 n°9Q; p. 100 n°18 (1890).
Ecuador, Peru, Bolivia.
6. Colaenis telesiphe tithaustres Salvin.
Colaenis tithaustres, Salvinin Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 7, p. 415 (1871).
Colaents telestphe var. tithaustres, Weymetr in Reiss u. Stiibel, Reisen Sud-Am., Lep., p. 54 n° 35; p. 62 n° 49 (1890).
Ecuador.
3. GENUS DIONE, HUBNER
Dione. Hiibner, Verz. Schmett., p. 31, n° 257; idem, Exot. Schmett.. Vol. 2, Index zu Vol. 1 (spec. :
D. vanillae) (1821); Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 148 (1871); Scudder in Proc Amer. Acad. Sc.,
Vol. 10, p. 157 (1875); Méschler in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 315 (1876); Staudinger
u. Schatz, Exot. Schmett., Vol. 1, p. 86; Vol. 2, p. 114 (1887); Hahnel in Deutsche Ent. Zeit.
Lep. (Iris), Vol. 3, p. 240 (1890); Kirby, Handb. Lep., p. 47 (1894); Reuter in Acta Soc. Sc.
Fenn., Vol. 22, p. 51 (1896); Kirby in Hiibner u. Geyer, Exot. Schmett., Neue Ausg., p. 14
(1901); Holland, Butterfl. Book, p. 96 (1901).
Nymphalis (Subgen.) (part.). Linné, Syst. Nat. (10), p. 482 (Spec. : Papilio (N.) vanillae) (1758).
Dryas. Hiibner, Exot. Schmett., Vol. 1, t. 44 (spec. : D. phalervata vanillae (1806-19).
Cethosia (part.). Latreille, Gen. Crust. Ins.,Vol. 4, p. 200 (spec. : C. juno) (1809); idem, Consid. Gén.,
P- 440 (spec. ead.) (1810); Oken, Lehrb. Naturg., Vol. 3 (1), p. 725 (1815); Godart (Latreille u.)
in Enc. Méth. Zool., Vol. 9. p. 244 (spec. ead.) (1819); Ménétriés in Nouv. Mém. Soc. Nat.
Moscou, Vol. 7, p. 190 (spec. : C. vanilla) (1829); Griffith. Anim. Kingd. Cuvier, Vol. 15, p. 587
(1832); Lucas, Lep. Exot., p. 103 (spec. : C. julia, C. juno) (1835); Boisduval. Spec. Gén. Lép.,
Vol. 1, p. 117 (Typ : C. juno) (1836).
Argynnis (part.). Godart (Latreille u ) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 262 (spec. : A. vanillae) (1819);
Guérin-Méneville, Regne Anim. Cuvier, p. 476 (spec. : A. moneta = glycera) (1929-38); Poey in
Guérin, Mag. Zool. Cl. 9, Ins.,Vol. 2, Text zu t. 11 (1832); Griffith, Anim. Kingd. Cuvier,
Vol. 15, p. 587 (spec. : A. moneta, t. 2, f. 2) (1832).
Argyrea (part.). Billberg, Enum. Insect., p. 77 (spec. : A. vanillae) (1820); Scudder in Proc. Amer.
Acad. Sc., Vol. 10, p. 119 (1875). .
1) C. euchroia mellosa. — Statura subspeciei typice. Supra pallide ochracea, alarum anticarum apice. striga costali lata, fascia mediana de
imidia parte cost ad marginem distalem, alia subapicali brevi, tertia submediana fuscis; posticarum fascia costali et mediana, margine distali quoque
uscis; striga lata coloris fundalis inter fascias posticarum, in proximali sua parte albescente. Subtus picta ut in subspecie typica, sed pallidior, alarum
anticarum striga mediana pallide ochracea loco subrufz. — Eine ausgezeichnete Unterart, welche sich durch hell-ockerfarbene, etwa honiggelbe Grund-
farbe von der typischen unterscheidet. Der breite Streifen der Grundfarbe zwischen der dunkelen Vorderrand- und Mittelbinde des Hinterfliigels in der
proximalen Hiiltte weisslich gebleicht, dann allmihlich in ockergelb iibergehend; die hinter ihm liegende Mittelbinde breiter als bei C. exchro/za, distal
zwischen den Adern stark gezahnt und mit den Spitzen der Zihne beinahe die Binde am Distalrande berithrend; der Fliigel am Saum selbst im Hinter-
winkel schmal gelblich. — Unterseite matter in der Farbung, der breite, keilformige mittlere Streif der Grundfarbe des Vorderfliigels bleichgelb anstatt
rotbraun. — Vorderfliigellange 39 mm. Typ. 1 G, N° 55r i. coll. Stichel. Ecuador. — Hierzu r Gi. c. Mus. Berol.e c. Maassen, Venezuela (?), 1 coll.
H. Fruhstorter, Ecuador.
FAM. NYMPHALIDA 3)
Agraulis. Boisduval u. Leconte, Lép. Amér. sept., p. 142 (1833); idem, Spec. Gén. Lép., t. 10 (6 B),
f.7 (spec. : A. moneta=glycera) (1836); Blanchard in Hist. Nat. Ins., Vol. 3, p. 440 (1840); Double-
day, List Ins. Brit. Mus. Lep., p. 67; Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep.,
Vol. 1, p. 153 (1848); Erichson in Schomburgk, Reis. Guiana, Vol. 3, p. 596 (part.) (spec. :
A. vanillae) (1848); Chenu u. Lucas in Encycl. Papill.. p. 84 (1853); Lucas in Sagra, Hist. fis.
Cuba (2). Vol. 7, p. 227 (1856); C. Felder in Nova Acta Leop. Car. Akad., Vol. 18, n° 3, p. 7
(2. Sect.) (1861) ; C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon.,Vol. 5, p. 162; Vol. 6, p. r1ro (1861, 1862);
Morris, Synops. Lep. N. Amer., Vol. 1, p. 40 (1862); Bates in Journ. Ent., Vol. 2, p. 187 (1864);
Herrich-Schaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb., Vol. 18, p. 126; Vol. 19, p. 105 (falso Agraubis)
(1864, 7865); Reakirt in Proc. Acad. Philad., p. 243 (1866); Butler, Cat. diurn. Lep. Fab., p. 117
(1869); Boisduval, Lép. Guatém., p. 36 (1870); Scudder in Proc. Amer. Acad. Nat. Sc., Vol. to,
p- 105, n° 37 (1875); Druce in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 221 (1876); Edwards in Trans. Amer.
Ent. Soc. Philad., Vol. 6, p. 19 (1877); Godman u. Salvin in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 123
(1880); iidem in Biol. Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1, p. 169 (1881); iidem in Proc. Zool. Soc.
Lond., p. 315 (1884); Schaus in Papilio, Vol. 3, p. 187 (1884); Snellen in Tijdschr. v. Ent.,
Vol. 30, p. 20 (1887); Méschler in Abh. Senckenb. Ges., Vol. 16, p. 95 (1889); S. H. Scudder,
Butt. East. Un. St., Vol. 3, p. 1813 (1889); Aaron in Ent. Amer., Vol. 5, p. 22 (1889); Godman
u. Salvin in Whymper, Travels Great Andes Suppl., p. 100 (1892); iidem in Proc. Zool. Soc.
Lond., p. 515 (1896); Wright in Canad. Ent.. Vol. 28, p. 102 (1896); Dyar in Bull. U. S. Mus.,
De Ze pale |(oo2).
Agraubis. Herrich-Schiffer in Corr. Bl. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 105 (1865).
Colaenis. Bates in Proc. Zool. Soc. Lond., p. to (part.) (spec. : C. vanillae) (1863).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, Stirn kurz behaart, Augen breit eiférmig gewélbt,
nackt. Palpen (Taf. |, Fig. 9) den Kopf iiberragend, wie bei den vorigen Gattungen gegen das Ende
des Mittelgliedes vom Gesicht abgewendet und mit der Innenseite etwas, aber weniger als bei Meta-
mandana, nach oben gedreht, mehr oder weniger stark behaart, an dér Innenseite stets sparlicher, dorsal
und ventral starker, dort steht bei der Abwendung des Mittelgliedes von der Stirn ein starker ]Jaar-
biischel, ausserdem ventral lange, straff abstehende Graunenhaare. Basalglied ziemlich kurz, gleichmiassig
stark, nach oben gekriimmt, ventral an der Wurzel mit struppig abstehenden Haaren: Busalfleck
bohnenférmig, von kaum 1/3 der Lange des Gliedes oder kleiner, naher zur dorsalen als ventralen Seite
gelegen, die Erhéhung mit langen feinen, nach oben gerichteten Kegelgebilden dicht besetzt, gelblich
chitinisiert, die Grenzzone sehr sparlich behaart. Mittelglied etwa von dreifacher Linge des Basalgliedes,
gegen das Ende schwach verdickt, distal wiederum verjiingt und dort die dichter stehenden Haare mit
Schuppen durchsetzt. Endglied gut abgesetzt, spitz eiformig, vermége sehr starker, distal fast gleich-
massig abgeschnittener Bekleidung von breiterem Aussehen als der entschuppte Kérper des Gliedes,
immerhin etwas plumper als bei den vornergehenden Gattungen. Antennen diinn, distal kolbig verdickt
von halber Lange des Vorderfliigels oder etwas kiirzer, dorsal mehr oder weniger beschuppt, Segmente
schwach abgesetzt. Thorax und Abdomen nicht sehr schlank, aber proportioniert im Gesamteindruck
der Tiere. ersterer kurz, am hinteren Einschnitt dichter, fast wollig behaart, Abdomen mit kurzen,
anliegenden Harchen bekleidet, kiirzer als der Hinterfltigel. Vorderbein des of (Taf. 1, Fig. 10a) mit
eingliedrigem behaartem, leicht gekriimmtem, ziemlich spitz auslaufendem Tarsus, der etwas linger als
die Halfte der Tibia ist, oder deren ganze Lange anndhernd erreicht. Vorderbein des @ (Taf. |
Fig. 1Ob) mit fiinfgliedrigsem, mit Dornen bewehrtem Tarsus, das proximale Glied langer als die
anderen vier Glieder zusammen, diese etwas verdickt. Behaarung ziemlich dicht. Tarsus der Mittel-
und Hinterbeine mit einfachen Klauen, ohne Ballen oder seitliche Anhange (Taf. |, Fig. 11).
16 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Vorderfliigel ziemlich schlank, Apex fast eckig geschnitten, Distalrand am vorderen Medianast
stark eingebuchtet (Sectio I), oder der Fliigel breiter, fast rechtwinklig dreieckig, mit ziemlich spitzem
Apex und schwach konkav geschnittenem Distalrand. der in manchen Fallen vorn, namentlich an der
vorderen Radialis, schwach gezahnt ist. Vorderrand stets leicht gekriimmt, Hinterrand gerade. Costalis
lang gestreckt, manchmal der Subcostalis proximal dicht anliegend, etwa am letzten Drittel des Vorder-
randes in diesen miindend. Subcostalis fiinfastig. Stellung des SC 1, wie bei der vorhergehenden Gattung,
so auch hier nicht konstant, jedoch nie proximal vom Zellende, sondern unmittelbar an diesem oder in
verschiedenem, meist geringem Abstande jenseits desselben abgezweigt (C. phaetusa). SC 2 ist ziemlich
weit distalwarts vorgeschoben, seine Entfernung von SC 3 etwa gleich derjenigen der SC 3 von der
Gabelung des 4. und 5. Astes; SC 1 und 2 laufen in den Vorderrand. SC 3 und 4 in die Rundung des
_ Apex, SC 5 kurz hinter jenem in den Distalrand. Zelle von massiger Ausdehnung, unter halber Fliigel-
lange. V DC verkiimmert, mitunter als kurzer, rechtwinklig von SM abgezweigter kurzer Steg erkenn-
bar; MDC schraég in die Zelle einspringend, etwas distalwarts gebogen oder gewinkelt, der hintere
Schenkel dieses Winkels kiirzer als der vordere, am Scheitel desselben meist das Rudiment eines in
die Zelle riicklaufenden Aderansatzes; HDC etwas langer, in der vorher bezeichneten Richtung
der MDC fortlaufend, die Mediana in spitzem Winkel am Anfang des Buges von VM treffend. Die
Radiales leicht gekriimmt, ziemlich parallel, distal etwas divergierend. Die Mediandste in normaler
Stellung oder MM am Ursprung etwas naher zu HM als zu VM gestellt (D. vanillae). Nahe der
Wurzel an der Mediana ein nach hinten und distalwarts gerichteter kleiner Sporn. SM ganz leicht
geschweift. — Hinterfliigel annahernd dreieckig. Vorderrand gerade, Apex abgerundet recht- oder
spitzwinklig, Distalrand leicht konvex, etwas gewellt, Hinterwinkel miassig spitz, Hinterrand vorn
kaum gelappt. Praecostalis einfach, hakenférmig gegen die Fliigelwurzel gebogen. Costalis anfangs
nach vorn aufsteigend, dann dem Vorderrande dicht folgend, gestreckt in den Apex einlaufend.
SC proximal gerade, nach Abzweigung von V DC etwas nach vorn gekriimmt. VDC kurz, schrag nach
hinten abfallend, nur schwach stumpfwinklig abgesetzt in V R titbergehend; M DC in kurzer Kriimmung
von der H R fortgesetzt; HDC fehlt, Zelle offen, jedoch am Buge der VR nach hinten und nahe dem
Ursprung der MM an der Hauptader nach vorn das Rudiment der H DC in Gestalt eines kleinen Zapfens
oder einer Verdickung der Ader bemerkbar. Die Medianaste in normaler Stellung, SM lang, etwas
gekriimmt, in den Hinterwinkel auslaufend, H A etwa von 2/3 der Lange der vorigen, gestreckt in
den Hinterrand miindend.
In der braunen Farbung und schwarzen Zeichnung der Fliigeloberseite schliessen sich die
Vertreter der ersten Section eng an die Arten der vorigen Gattung an, wahrend diejenigen der zweiten
Section gewisse Aehnlichkeit mit der Tribus Argynnidi der Nymphalidae, auch in der Struktur und Filz-
Bekleidung der Mediandste, haben. Alle sind ausgezeichnet durch reiche Silberfleckung der Unterseite
des Hinterfliigels und harmonieren auch hierin mit den echten Argynnisformen, mit denen sie in einem
unverkennbaren Verwandtschaftsverhialtnis stehen.
Typus der Gattung : Papilio juno, Cramer (Boisduval, 1836).
Schema des Fliigelgeiders : Taf. |, Fig. 8.
Geographische Verbreitung der Arten. — Die Dione-Arten bewohnen Siid- Amerika von
Argentinien und Peru bis zur Nordkiiste, Colombia, Trinidad, die Antillen, Zentral-Amerika und die
Siidstaaten von Nord- Amerika.
FAM. NYMPHALIDA® 17
Sectio |. GONIOSIMI
Apex des Vordertliigels breit, fast eckig geschnitten, Distalrand des Fliigels
in der Mitte stark eingebuchtet.
1. Dione juno Cramer.
a. Dione juno juno Cramer.
Papilso juno, Cramer, Pap. Exot., Vol. 3, p. 38, t. 215 f. BC (1779); Index, p. 175 (1782).
Paptlio juno, Fabricius, Spec. Ins., Vol. 2, p. 112 (1781); Ent. syst., Vol. 31, p. 61 (1793).
Papilio juno, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett., Vol. 4, p. 94, t. 68 f. 1, 2 (1790).
Cethosia juno, Latreille, Gen. Crust. Ins., Vol. 4, p. 200 (1809).
Cethosia juno, Oken, Lehrb. Naturg., Vol. 3 (1), p. 725 (1815).
Dione juno, Hiibner, Verz. Schmett., p. 31 ne 258 (1816).
Cethosia juno, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 244 (1819).
Agraulis juno, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep , p. 67 (1844).
Agraubis juno Herrich-Schafter, Corr.-Bl. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 105 (1865).
Agraulis juno, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 117 (1869).
Agraulis juno, Drucein Proc. Zool. Soc. Lond., p 221 (1876).
Agraulis juno, Godman u. Salvin in Biol. Centr -Amer., Rhop., Vol. 1, p. 170 (part.) (1881); Proc. Zool. Soc.
Lond., p. 515 (1806).
Dione juno, Therese von Bayern in Berl. Ent. Zeit., Vol. 46. p. 254 (1901).
Dione juno, Kaye in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 170 (1904).
Argentinien, Paraguay, Brasilien, Peru, Bolivia, Colombia, Venezuela, Guayana, Trinidad. Antillen (?):
St.-Vincent, Grenada, Martinique.
4. Dione juno andicola Bates.
Agraulis andicola, Bates in Journ. Entom., Vol. 2, p. 187 (1864).
Dione juno var. andicola, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 148 (1871).
Agraylis andicola, Godman u. Salvin in Whymper, Travels Great Andes, Suppl. App., p. 100 (1892).
Dione juno var. andicola, Therese von Bayern in Perl. Ent. Zeit., Vol. 46, p. 254 (1901).
West-Ecuador : Chimborazo.
c. Dione juno huascama Reakirt.
Agraulis huascama, Reakirt in Proc. Ac. Sc. Philad., p. 248 no 14 (1866).
Dione juno var. huascama, Kirby. Cat. diurn. Lep., p. 148 (1871).
Agraulis juno var. huascama, Schaus, Papilio, Vol. 3, p. 187 (Biol.) (1884).
Agraulis juno, Godman u. Salvin in Biol Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1, p. 170 (1881); p. 670 (1901).
Honduras, Guatemala, Mexico, Antillen (?).
Sectio Il. STRONGYLOTYPICI
Vorderfliigel breit, Apex derselben ziemlich spitz abgerundet,
Distalrand nur flach konkav.
2. Dione vanillae Linné T))-
a. Dione vanillae vanillae Linné.
— Merian, Ins Surin, p. 25, t. 25 (1705).
Papilio (Nymphalis) vanillae, Linné, Syst. Nat. (10), p. 482, n. 146 (1858); ibidem (12), p. 787, n. 216 (1767).
Papilio vanillae, Linné, Mus. Lud. Ulr., p. 306 (1764).
1) Die Aufteilung der Art ist etwas problematisch, weil die Variabilitat in den verschiedenen Fluggebieten keinen konstanten Charakter
annimmt und tiberall Ruckschlage zur einen oder anderen Form vorkommen. Indesssen, es sind bei einer groésseren Reihe von Individuen gewisse allge-
meine Merkmale nicht zu verkennen, die eine Einteilung in Subspecies méglich erscheinen lassen, wenn nicht etwa Jahreszeitformen in Betracht kommen.
Die Abbildung in Clerck Icon. (1764), die als Typus der Art angenommen wird, zeigt eine cigentiimliche Gestaltung der Endzell- und Discalflecke des
Vorderfligels, welche miteinander verflossen sind, In dieser Gestalt tritt die Art hauptsichlich im nérdlichen Sidamerika auf (Subspecie a). Mit der Ver-
18 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Papilio vanillae, Clerck, Icon. Ins., t. 40, f. 2 (1764). 1).
Papilio vanillae, Fabricius, Syst. Ent., p. 518, n. 319 (1775) ; Mant. Ins., Vol. 2, p. 64, n. 604 (1787).
Dione vanillae, Hubner, Verz. Schmett., p. 31, n. 257 (part.) (1816).
Argynnis vanillae, Godart (Latreille u.) in Enc. Meth. Zool., Vol. 9, p. 262 (part.) (1819).
Argyrea vanillae, Billberg, Enum. Insect., p. 77 (1820).
Agraulis vanillae, Doubleday, List Ins. Brit. Mus., Lep., p. 66 (1844).
Agraulis vanillae, Blanchard in Hist. Nat. Ins., Vol. 3, p. 440 (part.) (1840).
Agraulis vanillae, Erichson in Schomburgk, Reis. Guiana, Vol. 3, p. 596 (1848).
Papilio vanillae, Sepp, Surin, Vlind., Vol. 2, p. 117, t. 55 (nicht getroffen) (1850).
? Agraulis vanillae, Bates in Journ. Ent . Vol. 2, p. 187 (1864).
Agraubis vanillae, Herrich-Schaffer in Corr.-Bl. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 105 (1865).
Dione vanillae, Méschler in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 315 (1876).
Dione vanillae, Kirby, Cat. diurn., Lep., p. 148 (part.) (1871); Suppl., p. 724 (1877).
Dione vanillae, Aurivillius in Sv. Akad. Handl. (2), Vol. 19, p. 104 (part.) (1882).
Dione vanillae, W. Muller in Zool. Jahrb.. Vol. 1, p. 436 (Biol.) (1886).
Dione vanillae, Hahnel in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 3, p. 134 (1890).
? Dione vanillae. Weymer in Reiss u. Sttbel, Reisen Stid-Amer. Lep., p. 33 (1890).
Dione vanillae, Moschler in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 315 (1876).
? Dione vanillae, Kaye in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 170 (1904).
Papilio venillae, Muller, Naturs. Linné, Vol. 5 (1), p. 622 (1776).
Papilio passiflorae, Fabricius, Ent. Syst., Vol. 31, p. 60, n. 189 (part.) (1793).
Guayana, Venezuela, Trinidad, Colombia; Panama (? typ.).
). Dione vanillae catella Stichel, nov. subsp. 2). — Taf. 2, Fig. 3 (().
Sud-Peru.
c. Dione vanillae lucina Felder.
Agraulis lucina, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon., Vol. 6, p. 110 (1862).
Agraulis lucina, Bates in Journ. Ent., Vol. 2, p. 187 (1864).
Agvaubis lucina, Herrich-Schaffer in Corr. Bl, Ver. Regensb., Vol. 19, p. 105 (1865).
Agraulis lucina, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 221 (1876).
Dione lucina, Staudinger (u. Schatz). Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Brasilien : Westliches Amazonas, Ecuador, Peru.
d. Dione vanillae maculosa Stichel, nov. subsp. 3).
Papilio vanillae. Cramer, Pap. Exot., Vol. 3, p. 34 (part.), t. 212, f. A, B (1779).
Dryas phalevata vanillae, Hubner, Exot. Schmett., Vol. 1, t. 44 (1806-19).
Dione vanillae, Hibner, ibidem. Vol 2, Index (1821).
Agvaulis vanillae, Blanchard in Hist. Nat. Ins., Vol. 3, p. 440 (part.) (1840).
Agrvaulis vanillae, Burmeister, Descr. Phys. Rép. Argent. Lep., Vol 1, p. 139 (1879).
Dione vanillae, Aurivillius in Sv. Akad. Handl. ,2), Vol. 19, p. 104 (part.) (1882).
Dione vanillae, Staudinger (u. Schatz). Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (part.) (1887).
Dione vanillae, Weymer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 55, p. 321 (1894).
Brasilien, Paraguay, Argentinien.
schmelzung der erwahnten Flecke ist gewohnlich eine Reduction der Flecke des Hinterfliigels verbunden. Demgegeniiber zeigt Cramers Bild (1. c. 1779)
im Vorderfliigel die Endzellflecke nur lose zusammenhingend. den vorderen Discalfleck im mittleren Medianzwischenraum weit distalwarts ausgeriickt. In
dieser Form finden wir die Art vorwiegend im mittleren und siidlichen Teil des Verbreitungsgebietes (Subspecies ¢). In Peru und im oberen Amazonas-
Gebiet scheinen sich zwei weitere Rassen ausgebildet zu haben, welche die charakteristischen Merkmale der typischen Unterart in potenzierter Gestalt
tragen (Subspecies d, c) und bei der Inselrasse (Antillen), die — soweit das vorhandene Material ein Urteil erlaubt — mit den Vertretern in Zentral- und
Nordamerika im allgemeinen uberstimmt, findet sich in der Regel auf lebhaft tarbigem Fond eine reiche Zeichnung, Verstirkung und Verbreiterung der
Vorderflugelflecke, die — wie bei der siidlichen Form — selten ganz zusammenfiiessen, aber reichlicher weiss gekernt sind (Subspecies e). Fur diese Form
muss die Benennung izsw/aris Maynard wiederhergestellt werden, obgleich die vom Autor gegebene Diagnose den Charakter der Rasse nicht recht
trifft. — Papilio passiflor@ Fabricius, ein Name, den J. E. Smith (1797) annimmt, weil er bezeichnender ist als vav7//ae (die Raupe lebt nicht an Vanilla,
sondern an Passiflora), ist als unbedingtes Synonym von Pafgilio vanidlae Linné, zu verwerfen.
2) Dione vanil/ae catella.— Dittert a subspecie typica statura paulo oblongiore. Supra fulva, alarum anticarum striga basali, maculis duabus cellula-
tibus rotundis, tertia discali, maculis tribus cohaerentibus, fasciam formantibus, discoidalibus serieque macularum marginalium cuneiformium nigris; posticis
macula subapicali, fascia lata marginali ochraceo-maculata nigris. Subtus subsp. typ. simillima. — Im Fligelschnitt etwas schlanker als D. vanzl/ae typ.
lebhafter rétlich ockergelb, der vordere runde Fleck in der Zelle des Vorderfligels langs der Subcostalis streifartig bis zur Fitigelwurzel ausgeflossen; am
Zellschluss eine aus den drei verstarkten schwarzen Flecken gebildete Schrigbinde, hinter ihr ein einzelnes rundes Fleckchen im hinteren Medianzwischen-
raum}; die keilformigen Flecke am Distalrande wesentlich verstarkt, auch im vorderen Teil an den Aderenden als langgezogene Dreiecke ausgepragt.
Hinterfliigel mit breitem Distalsaum, in denen rundliche Flecke der Grunbfarbe stehen und einem isolierten Fleck nahe dem Apex. Unterseite ohne
wesentliche Verschiedenheiten gegen die typische Unterart. Vorderfligellinge 36 mm. — Typ. 1 G, N® 157, i.c. H. Stichel; Sud-Peru : Pozuzo.— Aehnlich
der Subsp. Zczza, aber durch die Flecke im Discus des Vorder- und im Apex des Hinterfliigels sowie durch die kettenartige Saumbinde des letzteren aus-
giebig unterschieden.
3) Dione vanillae maculosa. — Differt a subspecie typica supra alarum anticarum maculis nigris cellularibus et discalibus inter se distantibus;
posticae ternis plerumque maculis discalibus instructae. — Im Vorderfligel der vordere Discalfleck weit von den Endzellflecken in distaler Richtung abge-
riickt; Hinterfliigel meist mit drei gut ausgebildeten schwarzen Flecken. Vergl. auch Note 1.—Typ. 2 Gt, 2 Q, N° 546-548, 618, i. c. Stichel. Siid- Brasilien,
Paraguay.
FAM. NYMPHALIDA 19
e. Dione vanillae insularis Maynard.
Agraulis insularis, Maynard, Contrib. to Science, Philad. Acad. Sc., Vol. 1, n. 2 (1889).
Papilio passiflorae, Smith (Abbot u.), Lep. Georgia, Vol. 1, p. 23, t. 12 (1797).
Dione passtflorae, Aaron in Ent. Amer., Vol. 5, p. 226 (1889).
Dione passiflorae, Cockerbell in Canad. Ent., Vol. 36, p 331 (1904).
Agraulis vanillae, Boisduval u. Leconte, Hist. Gén. Lép. Amer. sept., Vol. 1, p. 143, t. 42 (1833).
Agraulis vanillae, Lucas in Sagra Hist. fisic. Cuba (2), Vol. 7, p. 530 (1856).
2? Colaenis vanillae, Bates in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 10 (1863).
Agraulis vanillae, Butler, Cat. diurn. Lep. Fab., p. 117 (sine cit.) (1869).
Dione vanillae, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 148 (part.) (1871).
Agraulis vanillae, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1, p. 171 (part.) (1881); Proc. Zool. Soc.,
p. 315 (1884).
Dione vanillae, Gundlach, Contrib. Ent. Cubana, p. 57 (1881).
Agyraulis vanillae, Snellen in Tijdschr. v. Ent., Vol. 30, p. 20 (1887).
Dione vanillae, Moschler in Abh. Senckenb. Ges., Vol. 14, p. 27 (1887).
Dione vanillae, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (part.) (1887).
Agraulis vanillae, MOschler in Abh. Senckenb. Ges., Vol. 6, p. 95 (1889).
Agraulis vanillae, S. H. Scudder, Butt. East U. S., Vol. 3, p. 1814 (1889).
Agraulis vanillae, Wright, Canad. Ent., Vol. 28, p. 102 (1896).
Agraulis vanillae, Godman u. Salvin in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 515 (1896).
Agraulis vanillae, Dyar in Bullet. U. S. Nat. Mus., n. 52, p. 12 (1902).
Antillen, Zentral-Amerika, Siidstaaten von Nord-Amerika (bis etwa zum 35° Breitengrad, auch Pennsyl-
vanien, New Yersey, West-Virginia).
3. Dione moneta Gever.
a. Dione moneta moneta Geyer.
Dione moneta, Geyer in Hiibner, Exot. Schmett., Vol. 2, t. 20 (1820-26).
Agraulis moneta, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep., p. 66 (1844).
Agraulis moneta, C. Felder in Nova Acta Leop. Car. Akad., Vol. 18, no 3 (Neues Lep.. p. 7) (1861).
Agraulis moneta, Herrich-Schaffer in Corr.-Bl. Ver. Regensb., Vol. 19; p. 105 (1865).
Agraulis moncta, Butler in Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 12, p. 227 (1873).
? Dione moneta, \Veymer in Reiss u. Sttibel, Reisen Siid-Amer., Lep., p. 100, n. 19 (1890).
? Dione poeyi, Weymer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 55, p. 321, n. 57 (1877).
Bolivia, Oberes Amazonas-Gebiet.
b. Dione moneta butleri Stichel, nov. subsp. 1).
Dione poeyit, Butler in Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 12, p. 227 (part.) (1873).
Agraulis moneta, Godman u, Salvin in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 123 (1880) ; Biol. Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1,
P- 171 (part.) (1881).
Dione moneta, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Dione moneta, WWeymer in Reiss u. Stiibel Reisen Siid-Amer. Lep., p. 14, n.5; p. 40, n.3; p. 62,n 50 (sine
cit.) (1890).
? Dione moneta, Hahnel in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 3, p. 187 (1890).
Dione glycera, Kirby (non Felder!), Cat. diurn. Lep. Suppl., p. 724 (1877).
Colombia, Ecuador, Peru; ? Venezuela, Panama, Costa Rica.
c. Dione moneta poeyii Butler.
Dione poeyit, Butlerin Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 12, p. 227 (part.) (1873).
Argynnis imoneta vay.. Poey in Guérin. Mag. Zool. Cl. 9, Ins., Vol. 2, t. 11 (1832).
Agraulis moneta, Doubleday (Westwood u. Hewitson). Gen. diurn. Lep. t. 22, f. 1 (1847); Vol. 1, p. 154
(part.) (1848).
Agraulis moneta, Godman u. Salvin in Biol. Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1, p. 171 (part.) (1881).
Honduras, Mexico, Texas.
1) Dione moneta butleri. — Differt a figura Agraulis moneta (= poeyti) Doubleday (Gen. Diurn. Lep.) alarum posticarum curvaturis inter
ramos medianos fuscis absentibus aut obsoletis, maculis ocliraceis a fascia marginali includentibus reductis. — Gewohnlich weniger lebhaft gefarbt als die
Rasse aus dem nordlichen Zentral-Amerika, insbesondere der Contrast zwischen der dunklen Wurzelbestaubung und des Distalfeldes der Fliigel weniger,
immerhin aber noch deutlich, ausgepragt (die Grundfarbe der typischen Unterart ist fast eintonig), Auf dem Hinterfliigel fehlen die zwischen den Median-
asten hinter der Zelle bei socyi/ sehr deutlich ausgepragten dunklen Hogenlinien oder sind nur schwach angedeutet, dagegen ist die dunkelbraune Saum-
binde am Distalrande verstarkt, dementsprechend die darin liegenden Flecke der ockerfarbenen Grundfarbe verkleinert. Die Subspecies harmoniert im
Vorderfligel mit Subspecies poeyi?, im Hinterfliigel mit der typischen Unterart. — Typ. 2 +, N» 549, 623, Colombia, Rio Magdal. sup.; 1 dG, N° 620,
Ecuador, Balzapamba, i. c. H. Stichel.
20 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
4. Dione glycera Felder.
a. Dione glycera glycera Felder.
Agraulis glycera, C. u. R. Felder, in Wien. Ent. Mon., Vol. 5, p. 102 (part.) (186r).
Agraubis glyceria, Herrich-Schaffer in Corr.-Bl. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 105 (1865).
Agraulis glyceya, Godman u. Salvin in Biol, Centr.-Amer. Rhop., Vol. 1, p. r7I (part.) (1881).
Dione glycera, Hahnel in Deutsche Ent. Zeit., Lep. (Iris), Vol. 3, p. 187 (1890).
Argynnis moneta, Guérin-Menéville in Cuvier, Regne Anim. Ins,, Vol. 2, p. 476, t. 78, f. 2 (1829-44).
Agraulis moneta, Boisduval, Spec. Gén. Lép., Vol. 1, t. 10 (6 B), f. 7 (1836).
Dione moneta, Kirby, Cat. diurn, Lep., Suppl., p. 724 (1877).
Venezuela.
b. Dione glycera gnophota Stichel, nov. subsp. 1). — Taf. |, Fig. 4 (6).
Agraulis glycera, C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon., Vol. 5, p. 102, n. 75 (part.) (1861).
Agraulis glyceya, Druce in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 221 (1876).
Agraulis glycera, Godman u. Salvin in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 123, n. 71 (1880); Biol. Centr.-Amer. Rhop.,
Vol. 1, p. 191 (part.) (1881) ; in Whymper, Travels Gr. Andes, Suppl. App., p. 100, n. 29 (1892). f
Dione glycera, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (part.) (1887).
Colombia, Ecuador, Peru.
4. GENUS CETHOSIA, Fasricius
Cethosia. Fabricius, Syst. Gloss. M S., Illigerin Mag. Ins., Vol. 6, p. 280 n° 6 (1807) ; Latreille, Gen.
Crust. Ins., Vol. 4, p. 200 (Sect. 2) (1809); 1d., Consid. Gén., Pp. 440 (part., spec. typ. : C. cydippe,
C. juno) (1810); Oken, Lehrb. Naturg., Vol. 3!, p. 725 (part.) (1815); Latreille, Fam. Nat. Régne
An., p. 468 (als Cethoste) (1829); Boisduval. Spec. Gén. Lep., Vol. 1. p. 117 (Typ. : C. penthesilea,
juno) (1836); Blanchard in Hist. Nat. Ins., Vol. 3, p. 440 (1840); Doubleday, List Ins. Brit. Mus.,
p. 65 (1844); Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep , Vol. 1, p. 150 (1848);
Chenu u. Lucas in Ecycl. Papill., p. 83 (1835); Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind.
Comp., Vol. 1, p. 153 (1857); C. Felder in Nova Acta Leop. Car. Akad., Vol. 18 n°3, p. 7 (1861);
Herrich-Schiaffer in Corr. Bl. Ver. Regensb.. Vol. 18, p. 105 (1864); Kirby, Cat. diurn. Lep.,
p. 148 (1871); Vol. 19. p. gt (1865); Crotch in Cist. Ent., Vol. 1, p. 65 (1872); Scudder in Proc.
Amer. Acad. Sc., Vol. 10, p. 138 n° 241 (1875); Distant, Rhop. Malay., p. 170 (1882): Nicéville,
Butt. Ind. Burm. Ceyl., Vol. 2, p. 31 (1886); Semper, Schmett. Philipp., p. 100 (1887);
Staudinger u. Schatz, Exot. Schmett.. Vol. 1, p. 87; Vol. 2, p. 115 (1887): Ribbe in Deutsche
Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2. p. 224 (1889); Hagen in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen. (2), Vol. 7,
p- 202 (1890); Leech, Butt. Chin. Jap. Cor., p. 119 (1892-94); Kirby, Handb. Lep., p. 48 (1894);
Hagen in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 161 (1896); Reuter in Acta Soc. Sc. Fenn.,
Vol. 22, p. 53 (1896); Pagenstecher in Zoologica, Vol. 27. p. 64 (1899); Fruhstorfer in Ent. Zeit.
Stett., Vol. 61, p. 364 (1900); Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 176 (1900); Kirby in Hiibner u.
Geyer, Exot. Schmett., Neue Ausg., p.15(1go1); Bingham in Faun. Brit. Ind. Butt., p. 399(1905);
Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc., N° 45, p. 92 (1905).
Najas. Hiibner, Exot. Schmett., Vol. 1, t. 66 (spec. : N. turbida cydippe) (1806-19).
1) D. glycera gnophvta.— G supra colore fusco saturatiore quam in subspecie typica; signaturae omnes latiores, posticis subtus colore fundali
non brunneolo, sed fusco. — Felders Originale von 4, ¢/ycerva sind aus Venezuela und Neu-Granada angegeben. Als typische Vertreter werden solche
esterer Herkunft angenommen. Die Form von Columbien zeichnet sich durch dunklere Grundfarbe aus; die gesamte schwarze Zeichnung auf Ober- und
Unterseite ist verstarkt, namentlich erscheint die Quermakel in der Zelle des Vorderfliigels, die der Mediana in voller Breite aufsitzt, kraftiger, die vorde-
ren Winkel am Ursprung des hinteren und mittleren Medianastes sind dreieckig schwarz ausgefillt, die Spitzen dieser Flecke berithren vorn den Hinter-
winkel am Ursprung des mittleren und vorderen Medianastes. Grundfarbe der Hinterfliigelunterseite schwarzbraun anstatt hellkaffeebraun. Im hinteren
Medianzwischenraum des Vorderfliigels bildet sich nahe dem Fliigelrande zuweilen ein kleines dunkelbraunes, im Centrum weiss gekerntes Fleckchen.
Q heller in der Farbung, die dunklen Zeichnungen weniger intensiv, die Grundfarbe der Unterseite wie beim G der typischen Unterart. lyp.1 g',1 9
Ne? 621, 622, i. c. coll. Stichel. — Colombia, Cordill. p. Bogota.
FAM. NYMPHALIDA 21
Alazonia. Hiibner, Verz. Schmett., p. 46 (1816); idem, Exot. Schmett., Vol. 2, Index zu Vol. 1 (spec. :
A. cydippe) (1821); Scudder in Proc. Amer. Acad. Sc., Vol. ro, p. 107 (1875).
Eugramma. Billberg, Enum. Insect., p. 78 (1820).
Allgemeine Charaktere. — Kopf breit, Augen gross, breit eiférmig gewdlbt, nackt. Stirn
und Scheitel kurz behaart. Palpen (Taf. 1, Fig. 13) kraftig, deutlich dreiteilig, den Kopf tiberragend ;
Basalglied kurz, stark gekriimmt, Basalfleck von betrachtlicher Ausdehnung, die mit kegelférmigen
Spitzen in Reihen dicht bestandene, erhéhte Zone schmal aber ziemlich lang oval, die Zahne nach
oben gerichtet, proximal linger als in der distalen Halfte, am Rande wiederum verlangert; das Glied im
iibrigen sparlich beschuppt, in der Kriimmung dorsal eine biischelartige Ansammlung langer Schuppen
und Borsten; Mittelglied breiter, etwa von vierfacher Lange des ersten, dorsal mit einem abstehenden
pinselartigen Haarbiischel, an der Innenseite diinn beschuppt und behaart, beide Glieder aussen
dichter bekleidet, ventral mit langen, straff abstehenden Grannenhaaren besetzt; Endglied wiederum
sehr kurz, pfriemf6rmig, dicht und glatt anliegend beschuppt und behaart. Antennen ziemlich stark,
liber halber Fliigellange, distal keulenartig verdickt, dorsal diinn beschuppt, ventral mit zwei Langs-
rillen, die durch erhabene Grade getrennt und begrenzt sind, und in denen zahlreiche kurze feine
Harchen, gleichmiassig verteilt, und einzelne Borstenhaare stehen; die einzelnen Segmente schwach
abgesetzt, Keule verschieden stark, Endglied zapfenartig auslaufend. Thorax und Abdomen schlank,
letzteres kiirzer als der Hinterrand des Fliigels. Vorderbein des & (Taf. 1, Fig. 14a) mit eingliedrigem
stumpi endigendem Tarsus, welcher etwas gekriimmt ist und etwa 2/3 der Lange der Tibia hat; beide
dicht beschuppt und behaart. Vorderbein des 9 (Taf. 1, Fig. 14 b) mit fiinfgliedrigem Tarsus, welcher
mit starken, paarigen Dornen bewehrt ist, und dessen vier Endglieder verdickt und zusammen bedeu-
tend kiirzer sind, als das Proximalglied. Behaarung des Beines sparlich, am Femur dichter. Die
iibrigen Beine mit einer zweiteiligen, langen, ziemlich geraden Klaue ohne Anhingsel (Taf. I,
Fig. 16).
Vorderfliigel breiter oder schlanker, fast rechtwinklig oder stumpfwinklig dreieckig, Apex
abgerundet spitzwinklig, selten etwas vorgezogen. Vorderrand leicht gekriimmt, Distalrand gerade oder
etwas konkav, gewellt oder gezackt, Hinterrand gerade. Costalis etwas langer als der halle Vorderrand
des Fliigels. Subcostalis 5-astig; Stellung von SCr verdn-
derlich :
a. Unmittelbar an der vorderen Zellecke oder nur in
unwesentlichem Abstand proximal von derselben : Haufigster
Fall bei Cohors 1 und die Regel bei Cohors 3 (Taf. I,
Fig. 2).
6. Ineiniger Entfernung proximal vom Zellende : Vor-
wiegend bei Species 2 und 3 im Cohors 1 (Fig. 2).
c. Inkurzem Abstand distal vom Zellende: Anscheinend
die Regel bei Cohors 2, in Ausnahmefallen bei Cohors 3 und
selten bei Cohors 1 (C. dzblis).
Systematische Begriffe lassen sich nach diesen Merk-
Fig. 2.
malen nicht fixieren, weil die Anlage innerhalb der Kreise Gedader im Vorderfliigel von C. nietneri.
und sogar bei einer Art schwankt und die iibrigen morpho-
logischen Trennungscharaktere hiermit nicht harmonieren.— SC 2 und 3 entspringen in gleichmassigen
Abstanden zwischen der Zellecke und der Gabelung von SC 4 und 5; SC2 erreicht den Vorderrand,
SC3 lauft in den Apex und die letzten beiden Aeste in den Distalrand. Zelle kurz und breit, VDC
sehr kurz, haufig nur als knotige Verdickung markiert, MDC langer, etwas konkav in die Zelle einge-
bogen, die HDC fast in gleicher Richtung weiterlaufend, am Ende starker gekriimmt und in die
22 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Mediana am Ursprung des mittleren Medianastes oder nahe diesem einlaufend. Die Discocellulares
annahernd parallel, flach gebogen. Die Medianaste gestreckt, parallel, in gleichmassigem Abstand
voneinander; S M leicht geschweift, eine vor ihr liegende Faltenader deutlich markiert. — Hinterfligel
annahernd dreieckig. Vorderrand an der Basis etwas gelappt, dann fast gerade. Apex winklig abgesetzt,
Distalrand flach konvex, an den Aderenden stark gezackt oder gewellt; Hinterwinkel fast rechtwinklig,
Hinterrand fast gerade, vorn flach gelappt. Costalis anfangs steil nach vorn aufsteigend, dann in
allmahlicher Kriimmung dem Vorderrand geniahert, diesem folgend und in den Apex einlaufend.
PC rechtwinklig nahe der Fliigelwurzel abgezweigt, einfach, hakenférmig nach vorn gekriimmt, nicht
selten mit einem rudimentiren Ansatz nach der entgegengesetzten Richtung. Subcostalis zuerst gerade,
bei Abzweigung der sehr kurzen V DC stark gewinkelt, von da in flacher Kriimmung weiterlaufend.
VR und HR bilden eine lange, leicht gekriimmte Gabel. dergestalt, dass MDC in kurzem Bogen in
HR iibergeht. HDC vorhanden, aber nur als feine Voll-Ader; sie lauft am Ursprung der MM in die
Mediana und bewirkt einen undeutlichen Abschluss der kurzen und schmalen Zelle. Die Medianadern
in normalem Verlauf, SM lang und gerade, auch die HA sehr lang, etwas gekriimmt, in den Hinter-
winkel einlaufend.
Lebhaft, oben meist rétlich oder rotbraun gefarbte Falter, einige Arten mit auftalligem Geschlechts-
dimorphismus, die Q Q alsdann weisslich mit schwarzen Schattierungen, Binden, Streifen und Flecken,
viele Formen mit breitem schwarzem Apicalfeld und weisser Ultracellularbinde, einige mit prachtigem
Violett-Schiller, eine Art vorwiegend schwarz mit gelbem Fliigelsaum, alle namentlich bunt auf der
Unterseite, woselbst schwarze, teilweise blauliche Streifen einfassende, Striche sowie rote, weisse und
gelbe Flachen mit schwarzen Flecken auftreten; am Saum der Unterseite, meist auch auf der Oberseite,
stehen in allen Fallen grosse weisse submarginale Halbmonde oder Spitzbogen.
Typus der Gattung : Papilio cydippe L. (Latreille, 1810) r).
Schema des Fliigelgeiders : Taf. |, Fig. 12.
UEBERSICHT DER ARTEN UND FORMEN
A. Hinterfliigel auf der Unterscite mit discaler weisslicher Querbinde oder weissem
Proximalfeld.
A. Vorderfltigel breit, fast rechtwinklig dreieckig.
Cohors |. CYANIFORMES
a. Vorderfliigel vorwiegend rétlich, meist mit einer submarginalen Rethe linglichey weisser Ringe; unten stets mit
durchgehendey weisslicher Querbinde im Discus. Geschlechter meistens nicht wesentlich verschieden.
1. Cethosia biblis Drury.
a. Cethosia biblis biblis Drury.
: Papilio biblis, Drury, Ill. Nat. Hist., Vol. 1, p. 9, t. 4, f. 2, 2a \C) (1773).
Papilio biblis, Cramer, Pap. Exot., Vol. 2, p. 129, t. 175, f. A, B (1779).
Papilio biblis, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett., Vol. 9, p. 141 (part.), t. 248, f. 1, 2 (1798).
Cethosia biblis, Fabricius, Syst. Gloss. MS., Illiger in Mag. Ins., Vol. 6, p. 280 (1807).
1) Latreille hat 1. c. fir Cethosta zwei Typusbestimmungen erlassen : C cy.7¢pfe L., C. 720 Cramer. Dadurch, dass hiervon nur die eine Art,
C. cydippge, zu denjenigen gehért, welche urspriinglich in der Gattung enthalten oder aufgefiihrt waren (Fabricius. Illiger, 1807), kommt nur diese als
Gattungstypus in Betracht (Art. 30 der Internat. Nomenklaturregeln v. 1905).
FAM. NYMPHALIDZ® 23
Cethosia biblis, Horsfield u. Moore. Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp., Vol. 1, p. 153 (1857).
Cethosta biblis, Moore in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 699 (1878).
Cethosia biblis, Nicéville (Marshall u.) Butt. Ind. Burm. Ceyl., Vol. 2, p. 36 (1886).
Cethosia biblis, Wood Mason u. Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal (2), Vol. 55, p. 354 (1886).
Cethosia biblis, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia biblis, Leech, Butt. Chin. Jap. Cor., p. 120 (1894).
Cethosia biblis, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 184 (part.), t. 352, 353 (1899-1900).
Cethosia biblis, Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal (2), Vol. 71, p. 18 (1902).
Cethosia biblis, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 330 (1902).
Cethosia biblis, Bingham in Faun. Brit. Ind. Lep., Vol. 1, p. 402 (part.) (1905).
Papilio penthestlea, Fabricius (non Cramer), Spec. Ins., Vol. 2, p. 88, n° 390(1781); Ent.syst., Vol. 3 (1), p.114 (1793).
ethosia penthestlea, Latreille, Gen. Crust. Ins., Vol. 4, p. 200 (1809).
Alazonia symbiblis, Hubner, Verz. Schmett., p. 46, n° 421 (part.) (1816).
Cethosia biblina, Godart (Latreille u.) in Enc. méth., Vol. 9, p. 248 (1819).
Nord-Indien : Nepal, Sikkim, Bhutan, Assam. Burma, Tenasserim, Siam, Annam, West- u. Siid-China
(Hongkong). Hainan.
a. Forma thebava Grose Smith.
Cethosta thebava, Grose Smith in Ann. Mag. Nat Hist. (5), Vol. 19, p. 296 (1887).
Cethosia thebava, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot., Vol. 1, Nymphal., t. Cethosia 1 (1889).
Cethosia biblis ab. thebava, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett , Vol. 63, p. 331 (1902).
Cethosia biblis aberr., Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 185, t. 353 (1900).
Cethosia biblis, Bingham in Faun. Brit. Ind. Lep., Vol. 1, p. 402 (1905).
Burma.
“oO
- Forma 2 viridiana Fruhstorfer.
Cethosia biblis, forma 2 viridiana(!), Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit , Vol. 25, p. 331 (1906).
Im Fluggebiet der Art.
6. Cethosia biblis perakana Fruhstorfer.
Cethosia biblis perakana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 331 (1902).
Cethosia biblis, Distant, Rhop. Malay., p. 446, t. 38. f. 3 (1886).
? Cethosia biblis, Moore in Journ. Linn. Soc. Lond. Zool., Vol. 21, p. 33 (1886).
Malayische Halbinsel (Pahang, Perak). ? Mergui-Archipel.
ec. Cethosia biblis tonkingiana Stichel, nov. subsp. 1).
Cethosta biblis perakana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 347 (part.) (1902).
Cethosia biblis, Fruhstorfer, Wien. Ent. Zeit., Vol. 25, p. 331 (1906).
Tonking.
d. Cethosia biblis logani Distant.
Cethosia logani, Distant in Ent. Monthly Mag., Vol. 18, p. 134 (1881).
Cethosia logani. Distant, Rhop. Malay., p. 171, t. 8, f. 5 (1883).
Cethosia logani, Hagen in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen., 2. Ser., Vol. 7, p. 202 (1890).
Cethosia logani, Hagen in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 161, t. 1, f. 3 (Biol.) (1896).
Cethosia logani, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 186 (1900).
Cethosia biblis logani, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 336 (1902).
? Cethosia biblis, Hagen in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen., 2. Ser., Vol. 7, p. 202 (1890).
Malacca, Sumatra.
e. Cethosia biblis javana Felder.
Cethosia javana, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 384 (1866).
Cethosta biblis var. javana, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
Cethosia javana, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit., Vol. 41, p. 301, 381 (1897).
Cethosia javana, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 186 (1900).
Cethosia biblis javana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 62, p. 335 (1902).
Java.
1) Cethosia biblis tonkingiana, — Subspeciei C. 6. perakana similis, sed alarum anticarum supra area rubida latiore, subtus alarum omnium
picturis grosse nigris —Auf der Oberseite im Gesamteindruck wie C.4. perakana, aber das rote Fliiyelfeld etwas breiter und das Rot in der Zelle reichlicher
erhalten, die weissen ovalen Ringe im Distalfeld nicht sonderlich breiter als bei der typischen Unterart, derjenige im mittleren Medianzwischenraum
(zwischen HR und V M) in der Regel etwas verbreitert, ahnlich wie bei serakana (dort in Uebergiingen zu C. b. /nganz), bisweilen erscheint auch der fur
perakana charakteristische weisse Wisch am Zellende. Saum des Hinterfliigels sehr breit, die ilim foluenden Fleckreihen grob, ebenso alle schwarzen
Flecke und Striche der Unterseite; hier bilden sich an der distalen Grenze der goldgelben Discalbinde des Hinterfligels an den Adern starke schwarz-
liche keilformige Wischflecke. welche die folgende weisse Binde mit dicken schwarzen Flecken bogenformig besiiumen. — Es ist niclit unméglich dass es
sich hier nur um eine Zeitform handelt. — Typ. i. coll. A. Seitz, Frankfurt a./M. leg. H. Fruhstorfer Than-Moi (Tonking), Juni-Juli.
24,
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
f. Cethosia biblis buruana Holland.
Cethosia buruana, Holland in Novit. Zool., Vol. 7, p. 63 (1900).
Cethosia biblis buruana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 347 (1902).
Buru.
g. Cethosia biblis moesta Felder.
Cethosia moesta, C. u. Felder, Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 383 (1866).
Cethosia biblis var. moesta, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
Cethosia moesta, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia moesta, Ribbe in Corr.-Bl. Iris, Vol. 1, p. 205 (1887).
Cethosia biblis moesta. Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 338 (1902).
Cethosia biblis, Oberthiir in Ann, Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 498 (1880).
Halmaheira, Batjan, Ternate ; ? Andai (Oberthiur).
h, Cethosia biblis ceramensis Fruhstorfer.
Cethosia biblis ceramensis, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 349 (1902).
Ceram.
i. Cethosia biblis picta Felder. — Taf. 2, Fig. 5 (Q).
Cethosia picta, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 381 (1866).
Cethosia biblis var. picta, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
Cethosia picta, Snellen in Tijdschr. v. Ent., Vol. 21, p. 12 (1877).
Cethosia picta, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia picta, Holland in Proc. Boston Soc. Nat. Hist., Vol. 25, p. 62 (1891).
Cethosia picta, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 336 (1902).
Celebes.
j. Cethosia biblis togiana Fruhstorfer.
Cethosia picta togiana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 337 (1902).
Cethosta picta, Hopfter in Ent. Zeit. Stett., Vol. 35, p. 34 (1874).
Togian-Inseln.
k, Cethosia biblis nikobarica Felder.
Cethosia nikobarica, Felder in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 12, p. 484 (1862).
Cethosia nikobarica, C, u. R. Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 384, t. 48 f. 7, 8 (1866).
Cethosia biblis var. nikobayica, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
Cethosia nicobarica, Moore in Proc. Zool. Soc. Lond., Vol. 2, p. 583 (2) (1877).
Cethosia ntkobarica, WWood-Mason u. Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 51 (2), p. 16 (1882).
Cethosta nikobaricu, Nicéville (Marshall u.), Butt. Ind. Burm. Ceyl., Vol. 2, p. 37 (part.) (1886).
Cethosia nicobarica, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (part.) (1887).
Cethosia nikobarica, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 180 (part.) (1900).
Cethosia biblis nikobarica, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 334 (1902).
Cethosia nicobarvica, Bingham in Fauna Brit. Ind., Lep., Vol. 1, p. 401 (part.), fig. (1905).
Nikobaren.
1. Cethosia biblis andamanica Stichel, nov. subsp.1).
Cethosia ntkobarica, Nicéville (Marshall u.), Butt. Ind. Burm. Ceyl., Vol. 2, p. 37 (part.) (1886).
Cethosia nicobarica, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (part.), t. 34 (3, 2) (1887).
Cethosia nikobarica, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 180 (part.), t. 349 f. 1, 1a-c (1900).
Cethosta nicobarica, Bingham in Fauna Brit. Ind., Lep., Vol. 1, p. 401 (part.) (1905).
Cethosia biblis nov. subsp., Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 334 (1902).
Andamanen.
m. Gethosia biblis insularis Felder 2).
Cethosia insularis, C. Felder in Wien. Ent. Mon., Vol. 5, p. 300 (part.) (1861).
Cethosia tnsularis, Herrich-Schaffer in Corr.-Bl. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 91 (part.)(1865).
Cethosia biblis var, insularis, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (part.) (1871).
Cethosia eurymena, C. u. R. Felder (Boisduval MS.) in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 384 (1866).
1) Beschreibung vergl. Fruhstorfer, l. c. 1902. — Cotypus, 1 G', N° 1059, i. c. H. Stichel, Andamanen.
2) C. insularis ist als giltiger Name (1861 1. c.) fiir eine Mischform (biblis-Formen von Luzon und Mindanao) aufgestellt. Die Mischform ist von
ihrem Autor (1. c. 1866) unter Einfiihrung von zwei neuen Namen aufgeteilt worden. Dies Verfahren ist unzulassig, weil der urspriingliche Name einer der
aus der Aufteilung hervorgegangenen Einheiten erhalten bleiben muss. (Art. 3x der Internat. Nomenklaturregeln). C. ex7ymena ist deswegen einzuziehen.
FAM. NYMPHALID® 25
Cethosta biblis var. eurymena, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
Cethosta biblis var. eurymena, Dewitz in Verh. Leop. Carol. Akad., Vol. 44, p. 260, t. 9 f. 5, 5a, b (1882).
Cethosia euvymena, Semper, Schmett. Philipp., Vol. 1, p. 102; p. 340, t. 18 f. 1-3, t. A f. 4 (Raupe) (1887).
Cethosia biblis ewyymena, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 347 (1902).
Cethosia insularis philippina, Felder in Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 12, p. 485 (part.) (nom, nudum) (1862).
Luzon, Mindoro, Cebu, Camotes, Mindanao, Sarangani, Polillo, Cuyo.
n. Cethosia biblis amboinensis Felder.
Cethosta insularis var, amboinensts, C. Felder in Wien. Ent. Mon., Vol. 5, p. 300 (nom. nudum) (1861).
Cethosia ambotnensis, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 382 (1866).
Cethosia biblis var. amboinensis, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
2? Cethosta biblis var. ambotnensis, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Nat., Vol. 41, p. 91 (1888).
2? Cethosia biblis var. amboinensis, Pagenstecher in Abh. Senckenb. Ges. Naturk., Vol. 23, p. 390 (1897)
Cethosta biblis amboinensis, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 347 (1902).
Cethosia insularis, C. Felder in Wien. Ent. Mon., Vol. 5, p. 300 (part.) (1861).
Amboina, Saparua; ? Uliasser, Halmahera (Pagenstecher).
o. Cethosia biblis sandakana Fruhstorfer.
Cethosia biblis var. sandakana, Fruhstorfer in Soc, Ent., Vol. 13, p. 161 (1899).
Cethosia sandakana, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p, 186 (1900).
Cethosia biblis sandakana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 332 (1902).
Cethosia biblis sandakana, Shelford in Journ. Straits Branch. Asiat. Soc. N° 45, p. 92 (1905).
Cethosia biblis sandakana, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit., Vol. 25, p. 332 (1906).
Nord-Borneo.
p. Cethosia biblis alceste Fruhstorfer.
Yr
s
v
Cethosia biblis alceste, Fruhstorfer in Ins. Borse, Vol. 22, p. 36 (1905).
Cethosia biblis alceste, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 19, p. 106, f. 7 (1905).
Bawean.
. Cethosia biblis tambora Doherty.
Cethosia tambora, Doherty in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 40 (2), p. 171 (1891).
Cethosia tambora, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Nat., Vol. 49, p. 137, t. 2 f. 7 (1896).
Cethosta tambora, Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 66, p. 684 (1898).
Sumbawa.
. Cethosia biblis sumbana Pagenstecher.
Cethosia cyane var. sumbana, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Nat., Vol. 47, p. 53 (1894).
Cethosia tambora sumbana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 341 (part.) (1902).
Sumba.
. Cethosia biblis floresiana Fruhstorfer.
Cethosia tambora florestana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 341 (1902).
Flores.
. Cethosia biblis narmada Fruhstorfer.
Cetosia narmada, Fruhstorferin Soc. Ent., Vol. 11, p. 107 (1896); Berl. Ent. Zeit., Vol. 41, p. 380, t.g f. 2 (1897).
Cethosia narmada, Nicéville in Journ, Asiat. Soc. Bengal, Vol. 66 (2), p. 683 (part.) (1898).
Cethosia tambora naymada, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 338 (1902).
Lombok.
. Cethosia biblis narmadioides Nicéville.
Cethosta narvmadioides, Niceville in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 46 (2), p. 683 (1898).
Cethosia naymadioides, Nicéville in Journ. Bombay Nat. Hist. Soc., Vol. 12, p. 138, t. Y f. 11 (1898).
Cethosia tambora narmadioides, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 340 (1902).
Bali.
. Cethosia biblis atia Fruhstorfer.
Cethosta biblis atia, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 19, p. 105, f. 6 (1905).
Cethosia atia, Fruhstorfer in Wien Ent. Zeit., Vol. 25, p. 333 (1906).
Cethosia tambora sumbana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 347 (part.) (1902).
Kalao.
26 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
B. Vorderfliigel oben mit einer meist deutlichen ultracellularen wetssen oder wetsslichen Schragbinde odey ganz ohne
Weiss, unten die discale wetssliche Querbinde vorn verkiirzt oder ganz fehlend. Geschlechtey mihy oder
weiniger dimorph.
4%. Rote Querbinde der Hinterfliigel-Unterseite distal mit dem Ende der Zelle abschliessend, der dort liegende schwarze Fleck
an dey Begrenzung dey Binde den Zellschluss fast beriihvend, Die Valven des médnnlichen Copulationsapparates
diusserlich nicht sichtbar.
2. Cethosia cyane Drury.
Papilio cyane, Drury, Ill. Nat. Hist.. Vol. 1, p. 9, t. 4, f. 1 (2) (1773).
Papilio cyane, Fabricius, Syst. Ent., p. 503, n. 253 (1775) ; Spec. Ins., Vol. 2, p. 89, n. 392 (178r).
Papilio cyane, Donovan, Ins. Ind., t. 35. f. 2 (1800).
Cethosia cyane, Doubleday, List Ins. Brit. Mus. Lep., Vol. 1, p. 65 (1844).
Cethosia cyane, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep., Vol. 1, p. 152 (part.) (1848).
Cethosia cyane, Moore (Horsfield u.) Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp., Vol. 1, p. 155 (part.) (1857).
Cethosia cyane, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 100 (1869).
Cethosia cyane, Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 51 (2), p. 57 (1882).
Cethosia cyane, Nicéville, Butt. Ind. Burm, Ceyl., Vol. 2, p. 33 (1886).
Cethosia cyane, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia cyane, Reuter in Acta Soc. Sc. Fenn., Vol. 22, p. 53 (1896).
Cethosia cyane, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 177, t. 348 (1900).
Cethosia cyane, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 372 (1900); Vol. 63, p. 346 (1902).
Cethosia cyane, Bingham in Faun. Brit. Ind. Lep., Vol. 1, p. 400 (1905).
Cethosia cyane, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit., Vol. 25, p. 330 (1906).
Sikkim, Assam, Burma, Ober-Tenasserim, Siam, Annam, Tonking.
3. Cethosia nietneri Felder.
a, Cethosia nietneri nietneri Felder.
Cethosia nietneyi, Herrich-Schaffer in Corr.-Bl. Ver. Regensb., Vol. 19, p. 91 (nom. nud.) (1865).
Cethosta nietneri, Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 280, t. 48, f. 5, 6 (1866).
Cethosia nietnert, Moore, Lep. Ceylon, . 51, t. 27, f. 3a, b (1881).
Cethosia nietnevt, Nicéville (u. Marshall), Butt. Ind. Burm. Ceylon, Vol. 2, p. 35 (1886).
Cethosta ntetnert, Nicéville u. Manders in Journ. Asiat Soc. Bengal, Vol. 68 (2). p. 191 (1900).
Cethosia nietneri, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 183, t. 351 (Biol.) (1900).
Cethosia cyane ntetneri, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 373 (1900); Vol. 63, p. 346 (1902).
Cethosia ntetnert, Bingham in Faun. Brit. Ind. Lep., Vol. 1, p. 404 (1905).
Ceylon.
b. Cethosia nietneri mahratta Moore.
Cethosia mahratta, Moore in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 556 (1872).
Cethosia mahratta, Niceville (u. Marshall), Butt. Ind. Burm. Ceyl., Vol. 2, p. 34, t. 22, f. 98 (2) (1886).
Cethosia mahratta, Davidson u, Aitken in Journ. Bombay Soc. Nat. Hist., Vol. 5, p. 270,t. B, f. 1, 1@(Biol.) (1890).
Cethosta mahratta, Kirby, Handb. Lep., Vol. 1, p. 49, t. 10 (1894).
Cethosta mahratta, Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 69 (2), p. 224 (1900).
Cethosia mahratta, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 181. t. 350 (1900).
Ceth sta cyane mahratta, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 372 (1900); Vol. 63, p. 346 (1902).
Cethosia mahratta, Bingham in Faun. Brit. Ind. Lep., Vol. 1, p. 403 (1905).
Papilio cyane, Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus, E.-Ind. Comp., Vol. 1, p. 155(part.), ?t.5, f. 8, 8a (Biol.) (1758).
Papilio cyane, Cramer, Pap. Exot., Vol. 4, p 12; p. 248 (Pap. Nymph. Phal. cyane), t. 295, f. C, D (1780).
Papilio cyane, Fabricius, Mant. Ins , p. 84 (1787) ; Ent. syst., Vol. 3 (1), p. 115 (1793).
Papilio cyane, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett., Vol. 9, p. 144 (part.), t. 248, f. 3, 4 (1798).
Cethosia cyane, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 247 (1819).
Papilio cyane, Duncan, Foreign Butt., p. 147, t. 14 (1837).
Alazonia symbiblis, Hubner, Verz. Schmett., p. 46 (part.) (1816).
Stid-Indien : Karwar, Malabar, Kanara, Calicut, Trevandrum.
4. Cethosia penthesilea Cramer.
a. Gethosia penthesilea penthesilea Cramer.
Papilio penthestlea, Cramer (non Fabricius), Pap. Exot., Vol. 2, p. 78, t. 145, f. B. C. (1777).
Papilio penthestlea, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett., Vol. 7, p. 39, t. 159, f. 5, 6 (1794).
FAM. NYMPHALIDA® 27
Cethosia penthesilea, Oken, Lehrb. Naturg., Vol. 3 (1), p. 725 (1815).
Cethosia penthestlea, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 248 (1819).
Cethosia penthestlea, Lucas, Hist. Nat. Lép. Exot., p. 106, t. 55, f. 1 (1835).
Cethosia penthesilea, Blanchard in Hist. Nat. Ins., Vol. 3, p. 440 (1840).
Cethosia penthestlea, Horsfield u. Moore, Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp., Vol. 1, p. 154 (1857).
Cethosia penthesilea, Butler (non Fabricius), Cat. diurn. Lep. Fabr., p. rox (sine cit.) (1869).
Cethosia cyane var. penthestlea, Kirby, Cat. diurn Lep.. p. 149 (1871).
Cethosia penthesilea, Snellen in Tijdschr. v. Ent., Vol. 38, p. 7, t. 1, f. 2 (aberr.) (1895).
? Cethosia penthesilea, Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Naturk , Vol. 49, p. 195 (1896).
? Cethosia penthesilea, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Naturk., Vol. 51, p. 183 (1898).
Cethosia penthestlea, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit., Vol. 41, p. 301 (1897).
Cethosia penthesilea, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 186 (part.) (1900).
Cethosia penthestlea, Snellen in Tijdschr. v. Ent., Vol. 45, p. 80 (1902).
Cethosta penthesilea, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 374 (part., sine cit.) (1900); Vol. 63, p. 346 (1902).
Java, Kangean-Inseln, Bawean (coll. Stichel n° 1050-1).
6. Cethosia penthesilea exsanguis Fruhstorfer.
Cethosia penthesilea exsanguis, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit., Vol. 41, p. 382 (1897); Vol. 42, p. 4 (1897).
Cethosia penthesilea exsanguis, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 376 (1900).
Cethosia penthesilea exsanguts, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 19, p. 105, f. 5 (1905).
Cethosia cyane, Rober in Tijdschr v. Ent. Vol. 34, p. 302 (18901).
Cethosta penthesilea, Nicéville in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 66 (2), p. 683 (part.) (1898).
Lombok, Kisser.
c. Cethosia penthesilea paksha Fruhstorfer.
Cethosia penthesilea paksha, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 19, p 105 (1905).
C. thosia penthesilea paksha, Fruhstorfer in Wien. Ent. Zeit., Vol. 25, p. 331 (1906).
Wetter, Timor, Letti-Inseln (No 1053 i. c. Stichel).
@, Cethosia penthesilea filiola Fruhstorfer.
Cethosia penthesilea filiola, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 348 (1902).
Cethosia penthestlea, Doherty in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 61, p. 171 (part.) (1891).
Cethosia penthestlea, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Naturk., Vol. 49, p. 137 (part.) (1896).
Cethosia penthesilea, Frubstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol 61, p. 374 (part.) (1900).
Sumba.
e. Cethosia penthesilea diffusa Fruhstorfer.
Cethosia penthesilea diffusa, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 19, p. 105 (1905).
Cethosia penthesilea, Doherty in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 61 (2), p. 171 (part.) (1891).
ethosia penthesilea, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Naturk., Vol. 49, p. 137 (part.) (1896).
Cethosia penthesilea, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 374 (part.) (1900).
Sumbawa.
an
p3. Rote Querbinde der Hinterfliigelunterseite distal am Zellende zahnartig austretend, dey schwarze Fleck an der Begrenzung mehr (NO 6)
oder weniger (N° 5, 7, 8) weit distal vorgeschoben. Die Chitin-Valven des mannlichen Copulationsapparates dusserlich sichtbar.
5. Cethosia methypsea Butler.
a. Cethosia methypsea methypsea Butler.
Cethosia methypsea. Butler in Trans. Linn. Soc. Lond (2), Zool., Vol. 1, p. 543 (1879).
Cethosia methypsea, Distant, Rhop. Malay., p. 170. t. 8, f. 9 (1882).
Cethosia methypsea, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 186 (1900).
Cethosia methypsea. Fruhstorfer in Ent. Zeit Stett., Vol. 61. p. 371 (1900).
Malacca.
b. Cethosia methypsea carolinae Forbes. — Taf. 2, Fig. 6 (<*).
Crthosia carolinae, Forbes, Natur. Wander., p. 274 (1885).
Ccihosia cayolinae, Nicéville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 64 (2), p. 401 (race of methypsea) (1895).
Cethosta carolina, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 186 (1900).
Cethosia methypsea + ? C. cyane, Hagen in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen. (2), Vol. 7, p. 202 (1890); Deutsche Ent
Zeit. Lep. (Iris), Vol. 9, p. 161 (1896).
Cethosia penthesilea, Snellen in Midden-Sumatra, Vol. 4 (Lep.), p. 117 (1892).
Cethosia penthesilea cavolinae, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 378 (1900) ; Vol. 63, p. 347 (1902).
Sumatra
28 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
6. Cethosia hypsea Doubleday.
a. Cethosia hypsea hypsea Doubleday.
Cethosia hypsea, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep., t. 20 f. 4 (1847), Vol. 1, p. 151 (1848).
Cethosia hypsea, Chenu u. Lucas, Encycl. Papill., p. 83, f. 184 (1853).
Cethosia cyane var. hypsea, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (part.) (1871).
Cethosia hysea, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 365 (1900).
Cethosia hypsea, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 186 (part.) (1900).
Cethosia hypsea, Shelford in Journ. Straits Branch Asiat. Soc, No 45, p. 92 (1905).
Borneo.
b. Cethosia hypsea aeole Moore.
Cethosia aeole, Moore (Horsfield u.) (De Haan MS.), Cat. Lep. Mus. E.-Ind. Comp., Vol. 1, p. 154 (part.) (1857).
Cethosia aeole, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 187 (part.) (1900).
? Cethosia cyane, Hagen in Tijdschr. Nederl. Aardr. Gen., 2. Ser., Vol. 7, p. 202 (1890); Deutsche Ent. Zeitschr.
Lep. (Iris), Vol. 9, p. 161 (1896). :
? Cethosia cyane, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Naturk., Vol. 43, p. 4 (1890).
Cethosia hypsina, Hagen in Berl. Ent. Zeit., Vol. 37, p. 148 (part.) (1892).
Cethosia hypsina, Nicéville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 64 (2), p. 401 (part.) (1805).
Cethosia hypsea hypstna, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 365 (part.) (1900).
Sumatra, Bangka, Billiton.
c. Cethosia hypsea hypsina Felder (subsp. dubia).
Cethosia hypsina, C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 385, No 559 (1866).
Cethosia cyane var. hypstna, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
Cethosia hypstna, Distant, Rhop. Malay., p. 170, t. 8, f. 6-8 (1883).
Cethosia hypsina, Nicéville, Butt. Ind. Burm. Ceyl., Vol. 2, p. 35 (1886).
Cethosia hypsina, Hagen in Berl. Ent. Zeit., Vol. 37, p. 148 (part.) (1892).
Cethosia hypstna, Nicéville u. Martin in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 64 (2), p. 401 (part.) (1895).
Cethosia hypsea hypsina, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 365 (part.) (1900).
Cethosia hypsina, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 186 (part.) (1900).
Cethosia hypsina, Bingham in Faun. Brit. Ind. Lep., Vol. 1, p. 402 (1905).
Malayische Halbinsel, Pegu, Siid-Tenasserim.
d. Cethosia hypsea fruhstorferi Stichel, nov. subsp. 1).
Cethosia aeole, C. u. R. Felder (non Moore) in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 385 (1866).
Cethosia aeole, Fruhstorfer in Berl. Ent. Zeit., Vol. 41, p. 301 (1897).
Cethosia aeole, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 366 (1900).
Cethosia cyane var. hypsea, Kirby, Cat. diurn, Lep., p. 149 (part.) (1871).
Java.
e. Cethosia hypsea palawana Fruhstorfer.
Cethosia hypsea palawana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 367 (1900).
Cethosia hypsea vay., Staudinger in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 2, p. 44 (1889).
Cethosia hypsea var. hypsina, Semper, Schmett. Philipp., Vol. 1, p. 340 (1892).
Palawan
jf. Gethosia hypsea boholica Semper.
Cethosia luzonica var. boholica, Semper, Schmett. Philipp. Vol., 1, p. ror, t. 18 f. 9 (1888).
Cethosia hypsea boholica, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 368 (1900).
Cethosia boholica, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 187 (1900).
Bohol, Leyte, Zebu, Panaon.
g. Cethosia hypsea pariana Semper.
Cethosia luzontca var. partana, Semper, Schmett. Philipp., Vol. 1, p. ror (1888).
Cethosia hypsea pavtana, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett.. Vol. 61, p. 368 (1900).
Cethosia pariana, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 187 (1900).
Panay, Guimaras, Negros. ‘
1) Cethosia hypsea fruhstorferi. — S. Alarum omnium supra area rufa latiore quam in subspecie typica, immaculata, anticarum fascia subapi-
cali cretacea. Q anticarum area rufescente angustissima, sed longiore. plagae albidae summae experte, posticarum maculis discalibus vivacissimis. —
Beim of die rote Zone beider Fligel stark verbreitert, im Vorderfliigel ist fast die ganze Zelle davon ausgefiillt, so dass sich die der Art eigentiimlichen
schwarzen Querstriche darin deutlich abheben; Subapicalbinde kreideweiss, von geringer Ausdehnung. Hinterflugel mit verschmilertem Saum, ohne
schwarze Submarginal- und Discalflecke. — Beim Q das rétliche Hinterrandfeld des Vorderfliigels sehr schmal, oline weissliche Aufhellung, aber linger
gestreckt als bei der typischen Unterart, die Subapicalbinde ebenfalls rein weiss, ziemlich breit; Discal- und Submaryinalflecke im roten Felde des Hinter-
fliigels sehr lebhaft aufgesetzt.— Typ. r G', 2 Q, i. c. H. Fruhstorfer, Ost- Java; 1 dG, N° 1054 i. c. Stichel, West- Java (Gede). Nahe verwandt mit C. 4. aeole
von Sumatra, aber durch das verbreiterte und ungefleckte rote Fligelfeld beim co und den reduzierten Hinterrandstreit des 9 auch von dieser zu trennen.
FAM. NYMPHALIDZ® 29
k. Cethosia hypsea luzonica Felder.
Cethosta luzonica. C. u. R. Felder in Wien. Ent. Mon., Vol. 7, p. 107 (1863).
Cethosta cyane var, luzontca, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
Cethosia luzonica, Semper, Schmett. Philipp., Vol. 1, p. 101, t. 18 f. 6-8 (1888).
. Cethosia hypsea luzonica, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 368 (1900).
Cethosia luzonica, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 187 (1900).
Luzon.
i. Cethosia hypsea magindanaica Semper.
Cethosta luzonica var. magindanaica, Semper, Schmett. Philipp., Vol. 1, p. 102 (1888).
Cethosia hypsea magindanica, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 368 (1900).
Cethosta magindanica, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 187 (1900).
Mindanao.
&. Cethosia hypsea batuensis Stichel, nov. subsp. 1). — Taf. 3, Fig. 7 (Q).
Czthosia galinia batunensis, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 365, 371 (nomen nudum) (1900).
Cethosia cyane nov. subsp., Fruhstorfer, in Ent. Zeit. Guben, Vol. 20, p. 122 (1905).
Batu-Inseln (nachst Sumatra).
I, Cethosia hypsea pallaurea Hagen (subsp. dubia) 2).
Cethosia pallaurea, Hagen in Ent. Nachr., Vol. 24, p. 202 {1898).
Cethosia pallaurea, Hagen in Abh. Senckenb. Ges., Vol. 20, p. 333 (1902).
Cethosia cyane pallaurea, Stichel in Berl. Ent. Zeit., Vol. 48, S B. p. (15) (1903).
Cethosia gabinia pallaurea, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 370 (1900).
Mentawej-Inseln (nachst Sumatra).
7. Cethosia mindanensis Felder.
Cethosia mindanensis, Felder in Wien. Ent. Mon., Vol. 7, p. 106 (1863).
Cethosta cyane var. mindanensis, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 149 (1871).
Cethosia mindanensis, Semper, Schmett. Philipp.. Vol. 1, p. 100, t. 18 f. 45 (1888).
Cethosia mindanensis, Fruhstorfer, Berl. Ent. Zeit., Vol. 45, p. 16; Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 369 (1900).
Cethosta mindanensis, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 187 (1900).
Mindanao, Bazilan.
8. Cethosia gabinia Weymer. — Taf. 3, Fig. 8 (9).
Cethosia gabinia, Weymer in Ent. Nachr., Vol. 9, p. 191 (1883).
Cethosia gabinia, Kheil, Rhop. Nias, p. 20, t. 2 f.6, t. 5f. 26 (1884).
Cethosia gabinia, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 369 (1900).
Cethosia gabinia, Moore, Lep. Ind., Vol. 4, p. 187 (1900).
y. Beide Fliigel oben mit ockergelbem Wurselfeld, Distalteil schwarz mit blauem Schiller.
g. Cethosia lamarckii Godart.
a. Cethosia lamarckii lamarckii Godart. — Taf. 3, Fig. 9 (Q).
Cethosia lamarckii, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, p. 249 (1819).
Cethosia lamarckii, Lucas, Lép. Exot., p. 105, t. 54 f. 2 (1835).
Cethosia lamarckit, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia lamarcki, Rober in Tijdschr. v. Ent., Vol. 35, p. 302 (1892).
1) Cethosia hypsea batuensis. — Q Differt a femina subspeciei typ. supra colore undique pallidiore, alarum anticarum fascia albida lata ultra-
cellulari, annulis oblongis obsoleto-albidis subapicalibus; posticarum margine distali latissime nigrescente: subtus alarum omnium area distali flava ex parte
grisescente, serie macularum submarginalium nigrescentium majorum. — Oberseite in allen Teilen fahler gefarbt als beim Q der typischen Unterart, im
Apicalfeld bilden sich einige weissliche, langliche Ringflecke, der dunkle Saum des gelblichen, im Wurzelfelde rétlichgelben Hinterfligels sehr breit,
Disealfieck deutlich. Auf der Unterseite ist die gelbe Distalzone der Fligel mehr oder weniger grau tiberstaubt, die submarginalen Flecke sind stark ver-
grossert und fast kettenartig zusammenhangend. Vorderfliigellange 40 mm. Typ. 2 9, N° 1055/56, i.c. H. Stichel, Batu-Inseln.
Auf der Oberseite sehr ahnlich der Subsp. pa//aurea, diese aber lebhafter gefarbt, im Hinterflugel weniger gefleckt und deren Saum noch breiter.
2) Die Stellung dieser Form, welche nur im weiblichen Geschlecht bekannt, ist fraglich. Nach dem Eindruck der Oberseite erscheint die Einreih-
ung an dieser Stelle richtig, jedoch hat der schwarze Grenzfleck nahe dem Zellende an der roten Zone der Hinterfliigelunterseite eine lage, welche nicht
dem specifischen Charakter der yfsea-Formen entspricht. Vorausgesetzt, dass die Abbildung in diesem Punkte genau getroffen, liegt die Moylichkeit vor,
dass pallaurea an cyane oder ga*inia anzureilien ist. ;
30 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Cethosia lamarcki, Nicéville in Journ, Asiat. Soc. Bengal, Vol. 66 (2), p. 259 (1898).
Cethosia lamarcki, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 347 (1902).
Key-Inseln, Selaru, Babber, Kisser.
b. Cethosia lamarckii timorensis Stichel, nov. subsp. 1)
Cethosia lamarckii, Boisduval, Spec. Gén. Lép., Vol. 1, t. 9 f. 5, Tafel-Erklar. p. 3 (1836).
Timor.
B. Vorderfliigel schmal und schlank. Apex fast sichelartig ausgezogen.
Cohors Il. MYRINIFORMES
Hinterfliigel mit weissem Subdiscalfieck, beim of mit violettem Schiller.
10. Cethosia myrina Felder. — Taf. 3, Fig. 10 (Q).
Cethosia myrina, C.u. R. Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 386, t. 48 f. 3, 4 (1866).
Cethosia myrina, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia myrina, Holland in Proc. Bost. Soc. Nat. Hist., Vol. 25, p. 62 (1890).
Cethosia myrina, Rothschild in Deutsche Ent. Zeit., Lep. (Iris), Vol. 5, p. 435 (1892).
Cethosia myrina, Pagenstecher in Abh. Senckenb. Ges., Vol. 23, p. 390(1897).
Cethosia myvina, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 379 (1900).
Cethosia aeole, Felder (non Moore) in Wien. Ent. Mon., Vol. 4, p. 103, t. 1 f. 2 (1860).
Cethosia aeole, Hopfter in Ent. Zeit. Stett., Vol. 35, p. 34 (1874).
Cethosia aeole, Snellen in Tijdschr. v. Ent., Vol. 21, p. 13 (1877).
Celebes, Bangkai.
8
Forma ribbei Honrath.
Cethosia myrina vay. vibbei, Honrath in Berl. Ent. Zeit., Vol. 30, p. 206, t. 6 f. 3 (1886).
Cethosia myrina ab. ribbec, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 61, p. 381 (1900).
Bangkai, Celebes.
B. Hinterfliigel auf der Unterseite ohne weissliche Mittelbinde oder weisses
Proximalfeld.
Cohors II]. CYDIPPIFORMES
A. Vorderfliigel mit weisser Subapicalbinde.
11. Cethosia cydippe Linné.
a, Cethosia cydippe cydippe Linne.
Papilio cydippe, Linné, Amoen Acad., Vol. 6, p. 409, n° 76 (1763) ; Syst. Nat. ed. 12, p. 776, n° 163 (1767).
Papilio cydippe, Clerck, Icon. Ins., t. 36 f. 1 (1764).
Papilio cydippe, Fabricius, Syst. Ent., p. 503, no 253 (1775); Ent. syst., Vol. 3 (1), p. 112, n° 345 (1793).
Papilio cydippe, Herbst (Jablonsky u.), Naturs. Schmett., Vol. 9, p. 125, t. 245 f. 4, 5 (1798).
Papilio cydippe, Donovan, Ins. Ind., t. 34, f. 1 (1800).
Cethosia cydippe, Fabricius, Syst. Gloss. MS., Illiger in Mag. Ins., Vol. 6, p. 280 (1807).
Nayas turbida cydippe, Hiibner, Exot. Schmett., Vol. 1, t. 66 f. 1, 2 (1806-19).
Alazonia cydippe, Hubner, Verz. Schmett., p. 46, n° 419 (1816).
Cethosia cydippe, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth., Vol. 9, p. 747 (1819).
Cethosia cydippe, Lucas, Lép. Exot., p. 106, t. 55 f. 2 (1835).
1) Cethosia lamarckii timorensis. — Ditfert a subspecie typica alarum omnium supra area basali aurantiaca angustata, subtus strigis ferrugineis
discalibus obsoletioribus. — Drei Stiicke des Berliner Zool. Museums weichen dadurch ziemlich auffallig von der Originalbeschreibung Godarts und dem
Bilde Lucas’ ab, dass das goldgelbe Basalfeld der Oberseite beider Fligel stark verengert ist. Im Vorderfligel ist nur ein ungewisser gelblicher Basalwisch
hinter der Submediana vorhanden, im Hinterfliigel reicht der dunkle Iligelteil bis zum Ende der Zelle, umfasst diese vorn bis zur Abzweigung der vor-
deren Discocellularis aus der Subcostalis und bildet dort einen nach der Fligelwurzel vorgeschobenen Zahn. Auf der Unterseite sind die in dem dunklen
Fligelfelde vorhandenen roétlich-braunen, strahlenartigen Wischflecke des Vorderfliigels, mitunter auch diejenigen des Hinterfligels, undeutlicher. —
Typen 2 6,1 9 i. coll. Mus. Berol. N° 1683 (e. c. Maassen), Timor. — Ausser diesen Merkmalen erscheinen besagte Exemplare im Vergleich mit dem abge-
bildeten 9 (e. coll. Fruhstorfer, Babber) mit einem weit starkeren Blauglanz des schwarzen Fligelfeldes. Ob dies auch fiir Godarts Original, dessen Hei-
mat wohl talschlich mit Neu-Holland (Continent Australien) bezeichnet ist, zutrifit, entzieht sich der Beurteilung.
FAM. NYMPHALID/E 31
Cethosia cydippe, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. ror, n° 3 (1869).
Cethosia cydippe, Oberthiir in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 498 (part.) (1880).
Cethosia cydippe, Aurivillius in Svensk. Akad. Handl. (2), Vol. 19, p. 175 (1882).
Cethosta cydippe, Pagenstecher in Jahrb. Nassau. Ver. Nat., Vol. 37, p. 178 (1884); Vol. 41, p. 91 (1888); Abh.
Senckenb. Ges., Vol. 23, p. 390 (1897).
Cethosia cydippe, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia cydippe, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep, (Iris), Vol. 2, p. 224 (1889).
Cethosia cydippe, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 342 (1902).
Cethosia cydippe cydippe, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16, p. 36 (1903).
Papilto ino, Cramer, Pap. Exot., Vol. 1, p. 96, t. 62 f. A, B (1779).
Amboina, Ceram, Uliasser.
6. Cethosia cydippe bernsteinii Felder.
Cethosia bernsteini?, (Snellen v. V.i.1.), C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 379 (1866).
Cethosia cydippe var. bernsteintt, Kirby, Cat. diurn., Lep., p. 150 (1871).
Cethosia bernsteinii, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia cydippe var. bernsteintt, Ribbe in Corr.-Bl. Iris, p. 205, no 55 (1887).
Cethosia cydippe var. bernstetnii, Pagenstecher in Abh. Senckenb. Ges., Vol. 23, p. 390 (1897).
Cethosia cydippe bernstetni, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 343 (1902); Deutsche Ent. Zeit. Iris,
Vol. 16, p. 36 (1903).
Morotai, Halmaheira, Batjan, Ternate.
c, Cethosia cydippe obiana Fruhstorfer.
Cethosta cydippe obiana, Fruhstorfer in Ins. Borse, Vol. 20, p. 357 (1903).
Obi.
d. Cethosia cydippe iphigenia Fruhstorfer.
Cethosia cydippe iphigenia, Fruhstorfer in Ins. Borse, Vol. 18, p.389 (1901); Berl. Ent. Zeit., Vol. 47 S.B. p.(20) (1902).
Cethosia cydippe tphigenta, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 14, p.329(1902); Vol. 16, p. 36 (1903).
Cethosia cydippe iphigenta, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 347 (1902).
Cethosia cydippe var., Holland in Novit. Zool., Vol. 7, (Marz 1900).
Buru (Miro).
- Forma theona Fruhstorfer.
Cethosia cydippe theona, Fruhstorfer in Ins. Borse, Vol. 20, p. 164; Berl. Ent. Zeit., Vol. 49S. B. p. (6) (1904).
Cethosia cydippe theona, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16, p. 36, 37 (1903).
Westliches Buru.
e. Cethosia cydippe damasippe Felder.
Cethosia damasippe. C. u. R. Felder in Reise Novara, Lep., Vol. 2 (2), p. 379 (1866).
Cethosia cydippe var. damastppe, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1 (2), p. 123 (1877).
Cethosia cydippe var. damasippe, Oberthur in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 499 (1880).
Cethosia damasipfe, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia damasippe, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 8, p. 114 (Larve) (1895).
Cethosia cydippe var. damasippe, Hagen in Jahrb. Nassau. Ver. Nat., Vol. So, p. 82 (1897).
Czthosta cydippe damasippe, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 343 (1902); Deutsche Ent. Zeit. Iris,
Vol. 16. p. 36 (part.) (1903).
? Cethosia chrysippe, Butler, Cat. diurn. Lep. Fabr., p. 101 (1869).
? Cethosia cyane, Kirsch in Mitteil. Zool. Mus. Dresden, Vol. 1 (2), p. 123 (1877).
Cethosia cydippe, (subsp. damasippe -+- chrysippe), Grose-Smith in Novit. Zool., Vol. 1, p. 348 (1894).
Neu-Guinea (Festland), Salwatti, Mysol (?).
. Forma hermanni Fruhstorfer.
Cethosia cydippe damasippe ab. hermanni, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 344 (1902).
Cethosia cydippe damasippe ab. hermanni, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16, p. 36 (1903).
Deutsch-Neu-Guinea (Astrolabe-Bai),
J. Cethosia cydippe lucina Fruhstorfer.
Cethosta cydippe lucina, Fruhstorfer in Ins. Borse, Vol. 22. p. 36 (1905).
Cethosia cydippe damasippe, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16, p. 36 (part.) (1903).
Mafor, Jobi (Geelvink-Bai).
yg. Cethosia cydippe woodlarkiana Fruhstorfer.
Cethosia cydippe woodlarkiana, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit., Lep. (Iris), Vol. 14, p. 339 (1901); Ent. Zeit.
Stett., Vol. 63, p. 348 (1902).
32
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Cethosia cydippe woodlarkiana, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16, p. 37, t. 1, f. 6 (G), 5 (2) (p. 36,
falso woorlarkiana) (1903).
Woodlark-Insel (Britsch-Neu-Guinea).
h. Cethosia cydippe cleanthis Fruhstorfer.
Cethosia cydippe cleanthis, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 15, p. 173 (1902); Vol. 16, p. 37 (1903).
Cethosia cydippe cleanthis, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 348 (1902).
Trobriand-Insel (Kiriwina).
7, Cethosia cydippe alkmene Fruhstorfer.
Cethosia cydippe alkmene, Fruhstorfer in Deutsche Ent. Zeit. Lep. (Iris), Vol. 15, p. 173 (1902);Vol. 16, p. 37 (1903).
Cethosia cydippe alkmene, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 348 (1902).
Cethosia chrysippe, Godman u. Salvin in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 645 (part.) (1876).
Fergusson (d’Entrecasteaux-Inseln).
1, Cethosia cydippe imperialis Butler (subsp. dubia),
Cethosia imperialis, Butler in Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 18, p. 124 (1876).
Cethosia imperialis, Butler in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 469 (1877).
Cethosia chrysippe, Semper in Journ. Mus. Godeffroy, p. 11 (?part.) (1878).
Nord-Australien : Cap York.
k, Cethosia cydippe chrysippe Fabricius.
Papilio chrysippe, Fabricius, Syst. Ent., p. 503, no 252 (1775); Spec. Ins., p. 88 (1781); Mant. Ins. p. 47 (1787);
Ent. syst., Vol. 3 (1), p. 112 (1793).
Papilio chrysippe, Donovan, Ins. New Holl., t. 24 f. 1 (1805).
Cethosia chrysippe, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep., Vol. 1, p. 152 (1848).
. Cethosia chrysippe, Semper in Journ. Mus. Godeffroy, p. 11 (part.) (1878).
Cethosia chrysippe, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87, t. 34 (1887).
Cethosia cydippe chrysippe, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63 (part.), p. 344 (1902); Deutsche Ent. Zeit.
Iris, Vol. 16, p. 37 (1903).
Oestliches Australien (Queensland).
1. Cethosia cydippe cydalima Felder.
Cethosia cydalima, C. u. R. Felder in Reise Novara, Vol. 2 (2), p. 380, t. 48, f. 1, 2 (1866).
Cethosia cydippe cydalima, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 345 (1902); Deutsche Ent. Zeit. Iris. Vol. 16,
p. 37 (1903).
Cethosia cydippe var. cydalina, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 150 (part.) (18712).
Cethosia cydippe var. cydalina, Oberthiir in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 499 (1880).
Cethosia cydippe var. damasippe, Ribbe in Corr.-Bl. Iris, Vol. 1, p. 83 (1886).
Aru, Wokan, Goram.
m. Cethosia cydippe insulata Butler. — Taf. 3, Fig. 11 (Q).
Cethosia insulata, Butler in Cist. Ent., Vol. 1, p. 165 (1873).
Cethosia cydippe insulata, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 345 (1902) ; Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16,
p. 37 (1903).
Cethosia cydalima, Nicéville (u. Kithn) in Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 67, p. 258, t. 1, f. 2-2 c (1898).
Cethosia cydippe var. cydalina, Kirby, Cat. diurn. Lep., p. 150 (part.) (1871).
Key-Inseln.
n. Gethosia cydippe sangira Fruhstorfer.
Cethosia cydippe sangiva, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Guben, Vol. 19, p. 215 (1905).
Insel Sangir.
o. Cethosia cydippe cyrene Wallengren. — Taf. 3, Fig.12 (c%).
Cethosia cyrene, Wallengren in Trans. Ent. Soc. Lond., p. 338 (1869).
Cethosia cydippe var. cyrene, Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 150 (1871).
Cethosia cydippe var. cyrene, Capronnier in Ann. Soc. Ent. Belg. Vol. 30, p. 5(1886).
Cethosia cyrene, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87 (1887).
Cethosia cydippe cyrene, Fruhstorfer in Ent, Zeit. Stett., Vol. 63, p. 345 (1902); Deutsche Ent. Zeit. Iris, Vol. 16,
p- 37 (1903).
Cethosia cydippe ab. cydalina, Oberthur in Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p, 499 (1880).
Cethosia chrysippe, Capronnier in Ann. Soc. Ent. Belg., Vol. 30, p. 5 (1886).
Waigeu.
FAM. NYMPHALID/® 33
B. Beide Fliigel mit weislichen Submarginalflecken oder gelbem Saum.
12. Cethosia obscura Guérin.
a, Cethosia obscura obscura Guerin.
Cethosia obscura, Guérin in Voy. Coquille, p. 277, t.35 f. 4 (1830).
Cethosia obscura, Boisduvalin Voy. Astrolabe, Lep., p. 111 (1832).
Cethosia obscura, Butler in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 283 (1874).
Cethosia obscura, Godman u. Salvin in Proc. Zool. Soc. Lond., p. 157 (1879).
Cethosia obscura, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit., Lep. (Iris), Vol. 11, p. 110 (1898).
Cethosia obscura, Pagenstecher in Zoologica, Vol. 27, p. 65 (1899).
Cethosia obscura, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 346 (1902).
Neu-Mecklenburg (N. Irland), Nusa-Laut.
6. Cethosia obscura antippe Grose Smith u. Kirby.
Cethosia antippe, Grose Smith u. Kirby, Rhop. Exot. Nymphal. Taf. Cethos. 1 (1889).
Cethosia antippe, Ribbe in Deutsche Ent. Zeit Lep. (Iris), Vol. 11, p. 110 (1898).
Cethosta antippe, Pagenstecher in Zoologica, Vol. 27, p. 65 (1899).
Cethosia obscura antippe, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 346 (1902).
Neu-Pommern, Neu-Lauenburg, Neu-Hannover.
c. Cethosia obscura gabrielis Rothschild.
Cethosia gabrielis, Rothschild in Novit. Zool., Vol. 5, p. 218, (1898). .
Cethosia obscura gabrielis, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 346 (1902).
Admiralitats-Inseln (St.-Gabriel).
13. Cethosia leschnault Godart.
Cethosia leschnault, Godart (Latreille u.) in Enc. Méth. Zool., Vol. 9, Suppl. p. 816 (1823).
Cethosia leschnault, Lucas, Hist. nat. Lép. Exot., p. 105, t. 54, f. 3 (1835).
Cethosia leschnaultit, Doubleday (Westwood u. Hewitson), Gen. Diurn. Lep., p. 152 (1848).
Cethosia leschnaultit, Herrich-Schiaffer in Corr.-Bl. Ver. Regensb. Vol. 19, p. 91 (1865).
Cethosia leschnaultii, Kirby, Cat diurn. Lep., p. 150 (1871).
Cethosia leschnaultit, Staudinger (u. Schatz), Exot. Schmett., Vol. 1, p. 87, t. 34 (1887).
Cethosia leschnaultit, Moore, Lep. Ind., Vol. 4. p. 187 (1900).
Cethosta leschnaulti, Fruhstorfer in Ent. Zeit. Stett., Vol. 63, p. 342 (1902).
Wetter, Timor. — ? Java.
Kh
Fir die Gruppierung der formenreichen Gattung Cethosia konnte die von H. Fruhstorfer (l.c.
Ig00 U. 1902) gegebene Uebersicht mit gutem Erfolge als Grundlage verwendet werden. Wenn von der
Reihenfolge abgewichen wurde, so geschah dies, um nach dem morphologischen Befund der Copulations-
apparate méglichst eine natiirliche Angliederung der einzelnen, auch habituell 4hnlichen Formen-
kreise zu ermédglichen. Auffallend ist, dass hier die morphologischen LEigentiimlichkeiten im
Fliigelgeader nicht mit denen des Copulationsapparates Hand in Hand gehen. Wahrend namlich der
Formenkreis von Cethosia biblis im Gedder sich an den von Cethosia cydippe anlehnt, lasst der eigentiimlich
konstruierte Geschlechtsapparat der oo ersteren Kreises eine nahe Verwandtschaft mit C. cyane, hypsea
und verwandte erkennen, wahrend die cydipfe-Formen hierin einen ganz anderen, abgesonderten
Charakter zeigen. Bei jenen ist der verktimmerte Uncus am Ansatz an das Tegumen mit 2 seitlichen,
hérnerartigen Ansdtzen versehen, bei diesen ist ein einfacher, schlanker Uncus ohne Anhange vorhanden.
Die von Fruhstorfer zur Gruppenbildung benutzte Eigentiimlichkeit der dusserlich sichtbaren Greifor-
gane (Valven) im Geschlechtsapparat der oo des hypsea-Kreises hat sich nur als ein specifischer
Art-Charakter erwiesen, da im iibrigen principielle Uebereinstimmung mit den anderen Arten der
Cyaniformes vorhanden und bei C. methypsea ein Uebergangs-Charakter bemerkbar ist. Bei dieser
Gelegenheit hat sich die Untersuchung der in Rede stehenden Organe, soweit die Objekte zuganglich
34 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
waren, wiederum als ein vorziigliches, wenn auch nicht véllig einwandfreies, Mittel zur Erkennung
der Collectiv-Species erwiesen. So konnte einerseits die Sonderstellung von C. nietneri und methypsea,
andererseits die Zusammengehorigkeit von C. bzblis und logani mit positiver Sicherheit erkannt werden.
Nur beziiglich C. gabinia verbleibt die Artberechtigung etwas zweifelhaft (? hypsea subsp.) und bei
C, pallaurea war es unméglich, einen Anschluss mit Sicherheit zu ermitteln, weil das Material fehlt.
Ganz isoliert steht C. myvina, sowohl im Habitus als im Bau der Copulationswerkzeuge, die etwas an
solche von Heliconius erinnern, also eine Mittelstufe zwischen denen der Cyaniformes und Cydippiformes
einnehmen. Es eriibrigte daher nur, die eine bekannte Art einer eigenen Gruppe zuzuteilen. Auch
diesmal habe ich Herrn H. Fruhstorfer meine Anerkennung zu zollen, der mir fiir diese Unter-
suchungen ein ausreichendes Material bereitwilligst zur Verfiigung stellte. Im wbrigen fand ich bei
Herrn Dr. Seitz, Frankfurt a. M., dankenswerte Unterstiitzung mit Material und durch Ueberlassung
interessanter Notizen tiber Lebensweise und biologische Verhialtnisse der Cethosien.
Die Méglichkeit, einige neue Formen der abgeschlossenen Subfamilie zu beschreiben, gereichte
mir wiederum zur besonderen Freude.
APA EIS GEE Ss UNE Aes VibkZ bl Grunts
Synonyma sind kursiv gedruckt.
y y g
A. GATTUNGEN, ABTEILUNGEN, GRUPPEN
(GENERA, SECTIONES, COHORTES. )
Seite. Seite.
ANDES 3 44S BO ah 4 Govan Beat ueetina i 15 DIY ASK oad rap N St Tego ack MERE eee et tera sel
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Cole ae it en i ee ne ee ere es (OS OT, INO CAEP EES (oro... 0 6 16 16 Op Gy Het
Gyaniformes hae wey-wee Meese es ot es ra Te 22
Cyclin, 4 2 ¢ o 5 5 PAN fen wots 30 Pantoporia:.. ap Sata se ee, ee 9
Philaetytas 28 (Se Aa eee ea
TON ONGY Ig! “hehe Shae ee Tee Sy wears eee 14
IDATA25 16) “aA ret Mele! Vat bs eee emo 9 Sinomayloiyoii, 5 5 5 5 5 5 0 8 59 ol UY
FAM. NYMPHALID/®
B. ARTEN, UNTERARTEN, FORMEN
(SPECIES, SUBSPECIES, FORMAE.)
Seite.
aeole, Cethosia. ‘ 28
aeole, Cethosia . - 28, 30
aeole, Cethosia hypsea 28
alceste, Cethosia biblis 25
alcionea, Papilio (Cetosia) . 11
alcyonea, Papilio (Cethosia) 3 Hig 1
alkmene, Cethosia cydippe . 32
amboinensis, Cethosia 6 25
amboinensis, Cethosia biblis (var.). 25
amboinensis, Cethosia imsularis var. 25
andamanica, Cethosia biblis. 24
andicola, Agraulis . 17
andicola, Dione juno (var.) . 17
antippe, Cethosia . 33
antippe, Cethosia obscura 33
ater, Papilio . 13
atia, Cethosia biblis 25
batuensis. Cethosia hypsea . 29
batunensis, Cethosia gabinia 29
bernsteini, Cethosia cydippe . 31
bernsteinii, Cethosia . 31
bernsteinii, Cethosia cydippe (var.) . . . . . 31
billina, Cethosia 23
biblis aberr., Cethosia . 23
biblis, Cethosia (Papilio) . 7 75}
biblis, Cethosia . 23, 24
biblis, Cethosia biblis. 22
biblis nov. subsp., Cethosia. 24
boholica, Cethosia. 28
boholica, Cethosia hypsea 28
boholica, Cethosia luzonica var. . 28
buruana, Cethosia. 24
buruana, Cethosia biblis. 24
butleri, Dione moneta. 19
carolinae (carolina), Cethosia C aS 27
carolinae, Cethosia methypsea (genthesiten) sitio be 27
catella, Dione vanillae 18
ceramensis, Cethosia biblis . 24
chrysippe, Cethosia. : 31, 32
chrysippe, Cethosia (Papilio) 32
chrysippe, Cethosia cydippe. 32
cillene, Colaenis iulia. 12
cillene, Papilio (Cethosia, Colaenis) . 12
cleanthis, Cethosia cydippe . 32
cyane, Cethosia (Papilio) . 26
cyane, Papilio (Cethosia)
5g et, eh, Pha, Bp
cyane nov. subsp., Cethosia.
cydalima, Cethosia
cydalima, Cethosia cydippe (var.) .
cydalima, Cethosia .
cydalina, Cethosia cydippe ab.
cydippe, Cethosia
cydippe, Cethosia (Albsenin, Papilio)
cydippe, Cethosia cydippe
cydippe, Cethosia (Najas turbida)
cydippe var., Cethosia .
cyrene, Cethosia eee eer
cyrene, Cethosia cydippe (var.)
damasippe, Cethosia .
damasippe, Cethosia cydippe eet yee
damasippe, Cethosia cydippe var. .
delila, Colaenis . Sea
deleta, Colaenis phaetusa forma
delila, Colaenis (Agvaulis, Cethosia, Papilio)
delila, Colaenis iulia .
dido, Agraulis (Cethosia, Colaenis, Nani Papilio,
Philaetria). 0 9 0
dido, Metamandana (Metamorpha)
dido, Metamorpha (Cethosta, Colaenis).
dido, Metamandana dido.
dido, Nereis viridis . 5
diffusa, Cethosia penthesilea.
euchroia, Colaenis.
euchroia, Colaenis euchroia .
eurymena, Cethosia . 9 6
eurymena, Cethosia biblis (var.) .
exsanguis, Cethosia penthesilea.
filiola, Cethosia penthesilea .
floresiana, Cethosia biblis
fruhstorferi, Cethosia .hypsea
gabinia, Cethosia .
gabrielis, Cethosia.
gabrielis, Cethosia obscura .
glycera, Dione (Agraulis).
glycera, Dione (Agraulis) .
glycera, Dione glycera
glyceria, Agraubis
gnophota, Dione glycera.
hermanni, Cethosia cydippe damasippe forma (ab.)
35
Seite.
5 SO)
5 She,
6 NS),
2 Bhs
.- 19,
Cc © © © ©
25
36 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
huascama, Agraulis
huascama, Dione juno (var.) .
lny7Peeel, CSIOSI 5 6 6 6 6 6 6
hypsea, Cethosia cyanevar. . . .
hypsea, Cethosia cyane var. . . .
hypsea, Cethosia hypsea .
hy psinaw CethoOsiareur cr Un nn
Aypsina, Gethosial @: )- 3:
hypsina, Cethosia cyane var. .
hypsina, Cethosiahypsea. . . . .
hypstna, Cethosia hypsea (var.) .
imperialis, Cethosia .
imperialis, Cethosia cydippe. . .
ino, Papilio .
insularis, Agraulis.
insularis, Cethosia.
insulavis, Cethosia . ATR Ss
insularis, Cethosia biblis (var.) .
insularis, Dione vanillae.
insulata, Cethosia .
insulata, Cethosia cydippe
iphigenia, Cethosia cydippe.
iulia, Colaenis (Cethosia, Papilio) . .
iulia, Colaenis iulia
javana, Cethosia 2
javana, Cethosia biblis (var.)
julia, Colaenis (Agr aulis, Dione, Philaetria)
julia, Dryas phalerata .
juno, Agraulis E
juno, Dione (Agraubis, Agraulis, Cethosia, Papilio)
juno, Dione juno
lamaryckt, Cethosia .
lamarckii, Cethosia
lamarckii, Cethosia lamarckii
leschnault, Cethosia
leschnaulti, Cethosia
leschnaultit, Cethosia .
logani, Cethosia
logani, Cethosia biblis
lucina, Cethosia cydippe.
lucina, Dione (Agraulis) .
lucina, Dione vanillae.
luteus, Papilio Maps Seiietaikee wae
lutulenta, Colaenis phaetusa forma.
luzonica, Cethosia.
luzonica, Cethosia cyane var.
luzonica, Cethosia hypsea
maculosa, Dione vanillae.
magindanaica, Cethosia .
Seite.
17
17
28
magindanaica, Cethosia hypsea.
magindanaica, Cethosia luzonica var. .
magindanica, Cethosia (hypsea) .
mahratta, Cethosia 0
mahratta, Cethosia cyane.
mahratta, Cethosia nietneri .
mellosa, Colaenis euchroia
methypsea, Cethosia
methypsea, Cethosia. 0
methypsea, Cethosia methypsea.
mindanensis, Cethosia
mindanensis, Cethosia cyane var. .
moderata, Colaenis iulia delila forma
moesta, Cethosia F
moesta, Cethosia biblis (var.)
moneta, Dione (Agraulis).
moneta, Dione (Agraulis, Argynnis) .
moneta, Dione moneta
moneta var., Argynnis
myrina, Cethosia
narmada, Cethosia.
narmada, Cethosia biblis.
narmada, Cethosia tambora
narmadioides, Cethosia
narmadioides, Cethosia biblis
narmadioides, Cethosia tambora .
nicobarica, Cethosia
nikobarica, Cethosia
ntkobarica, Cethosia ae
nikobarica, Cethosia biblis (var.)
nietneri, Cethosia .
nietneri, Cethosia cyane
nietneri, Cethosia nietneri
nigro-marginatus, Papilio (Heliconius)
nudeola, Colaenis iulia cillene forma .
obiana, Cethosia cydippe
Obscuray|Gethosiay. se
obscura, Cethosia obscura
ostara, Metamandana dido
ostara, Metamorpha dido var.
paksha, Cethosia penthesilea .
palawana, Cethosiahypsea. . .
pallaurea, Cethosia q
pallaurea, Cethosia cyane (gabinta) .
pallaurea, Cethosia hypsea . .
pariana, Cethosia . .
pariana, Cethosia hypsea. 68
pariana, Cethosia luzonica var.
passiflorae, Dione (Papilio) .
penthesilea, Cethosia (Papilio)
penthesilea, Cethosia (Papilio).
. 19, 20
FAM. NYMPHALID 37
Seite. Seite
penthesilea, Cethosia cyane var. 27 tambora, Cethosia. 25
penthesilea, Cethosia penthesilea 26 tambora, Cethosia biblis. 25
perakana, Cethosia biblis 23 telesiphe, Colaenis. 0 14
perakana, Cethosia biblis . 23 telesiphe, Colaenis telesiphe. 14
phaerusa, Papilio (Agraulis, Cethosia, Pantoporia, Phil- thebava, Cethosia . 0 23
CTI OS) doy fl Oh ROO ea ed eS 13 thebava, Cethosia biblis ab. . 23
PRGEYNSUS PL EUPtIIO) Wm rene ee ey 13 thebava, Cethosia biblis biblis forma . 23
phaetusa, Colaenis (Papilio Nymphalis). 13 theona, Cethosia cydippe. . . 31
pherusa, Agraulis 13 theona, Cethosia cydippe iphigenia forma 31
philippina, Cethosia insularis . 25 timorensis, Cethosia lamarckii . . 30
picta, Cethosia . 24 tithaustres, Colaenis telesiphe (var.) 14
picta, Cethosia biblis . 24 titio, Colaenis iulia 12
poeytt, Dione 19 togiana, Cethosia . 24
poeyli, Dione 19 togiana, Cethosia biblis . 24
poeyii, Dione moneta. 19 tonkingiana, Cethosia biblis. 23
ribbei, Cethosia myrina forma (ab.) 30 vanillae, Dione (Agraulis, Argynnis, Argyrea, Papilio). 17, 18
vanillae, Dione (Agraulis, Colaenis, Papilio). . 18, 19
BrdatanaeGethociae : BS vanillae, Dione vanillae . 17
sandakana, Cethosia biblis (var.) 25 CED A, ABTS NRE ue
sangira, Cethosia cydippe 32 vanillae, Papilio (Nymphalis) . 17
pnmbananGethosia: 35 ventllae, Papilio . Rae 18
simibane. Galax arsis. 25 viridiana, Cethosia biblis forma. 23
sumbana, Cethosia tambora. 25 wernickei, Metamandana dido! 5
stupenda, Colaenis phaetusa forma. 13 wernickei, Metamorpha 9
SLES UE 18, 28 woodlarkiana, Cethosia cydippe c Slily 3B
ERKLARUNG DER TAFELN
TAFEL I
Seite.
Fig. 1. Schema des Fliigelgeadders der Gattung Metamandana (M. dido wernichet 3) (4/3). - 6
— 2. Palpe von Metamandana dido dido, \nnenseite (10/1) . 7
— 3a. Vorderbein _- — o& (10/Z) . : 7
— 3b. — — — Q (10/1) . BY cd tages eect a Nera 7
— 4a. Schema des Fligelgedders der Gattung Colaemis (C. iulia iuwlia G) (8/5). . . . . IO
— 4b — — —- — (C. telesiphe telesiphe &) (5/3) -~ age)
— 5. Palpe von Colaenis phaetusa, Innenseite (10/1) . 9
— 6a. Vorderbein — — & (ro/1). : 6 10
— 6b. — — a 9 (20/1). Patel airs ia we: IO
— 7. (Wlaue am Tarsus des Mittelbeines von Colaenis iuliaiulia (60/1). : . . . . . . . I0
— 8. Schema des Fliigelgedders von Dione (D. vanillac vanillae G@) (9/5) . . . . =. =. ~~. ~~ 16
— 9g. Palpe von Dione vanillae vamllae, Innenseite (10/1). . ... .. .» 15
— oa. Vorderbein — — — o(to/1) . 4 5 2D
— 0b. — — — _— @ (10/1) 7 15
38 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Seite.
Fig. 11. Klaue am Tarsus des Mittelbeines von Dione junojuno (60/1) . . . . . =. =.=. =. =. OS
— 12. Schema des Fliigelgediders der Gattung Cethosia (C. biblis biblis) (8/5) . . . . . . 21, 22
=> i3, Palins won Cartas (Has lites, Inineme@ine (W/m) 5 5 6 5 56 6 56 5 5 0 co 56 o o Di
= tag, Voncledosin won Caliasin game manne 6 (WO)) 5 os) 6 4 0 50 6 5 6 56 5 5 6 6 Bil
— 146. — — — Sek OM(TO Ee ye ute. a. Sia | SUNN ae a ne
— 15. Klaue am Tarsus des Mittelbeines von Cethosia biblis biblis (30/1). . . . . . . . . 2
TAFEL 2
Fig, w,. Golagms anne cilia (Crenaiee Qs Sa oho ala 66 (0 6 ol) 6 oe ol «ED
= 2 S|) CATOIG GUANO SIANCIKS Gye) ant pao! es “GN Ne or 6-6 0 be 6. @ 6 6 0 ol CA
SD onehuantliaercatella, StiGheliiGst fa) se eaye. coeil ue) yee un eie gee hel Uses veyuete evs i tecied Se (mf aan eee TS)
SS ONG SS GATTO ALOT SIAN Gir) ess oth Ae ke Goer mig So) tg, 6 oe oc oo ZO
== ds GOIE GHANS aa NIGIIGE Gio! = lok oo Mo4 6 io seo) ojo os oS, 0 Sao 0 BA
— 6 WK TLELILY PSEA CAV OLLNGE LOT DES ga AVE es OL ee Red aRe Cs Lanse ed aCe aa ae
TaFEL 3
Pie, 9. Cones bysae Wann SGC Qs 2 6 « oo 6 0 5 0 a 6 8 6 of 6 6 0 2
— 6. =a oavinia NVeVviMen(O': i) ehh. 4 Va Vins nani etetabee Hi chy Deeenta Tr ins A OR eRe gee maeIR 2
— 9g == Vomendza Vern ECockige Os oe 246 ob) ee ao 8 oo 2D)
— 10, WINTON etal XC LO) em RTRs ae rere ate heute Woe yl Ghia Meena masa then initiate” SO
— It. Cy arp peransulata BUtler Ova ian caine wiser coat falas) econ eile eke ee ae ER 2
— 12. — == scyrene NValleniorensct i Re ccuaten Wat Sieh 6 a7 aa Unie ay reel cee eS ED
Del.ad nat. : Taf.1, H.Stichel; Taf. 2, Fig. 1-4, H. Plate; Fig. 5.6, u. Taf. 3, Fig. 8, 10. 12, R. Stichel;
Taf. 6, Fig. 7, 9, 11, F. Wichgraf.
Erklarung der Abkiirzingen : Vergl. Fasc. 20 u. 31.
Berlin, 15. April 1907.
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Dione 3
Vorderbeine
Colaenis
Vorderbeine
Metanindana
Vorderbeine
Cethosta
Vorderbeine
FAM. NYMPHALIDE
SUBFAM. DIONINA
1
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Colaents tulia cillene o @laenis euchroia mellosa J
Dione vanillae catella J Dione glycera gnophota S
=
Cthosia biblis picta Cethosia methypsea carolinae 3
FAM. NYMPHALIDA
SUBFAM. DIONINA
2
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Cethosia larmarckit lamarckii
D
(thosia cydippe cyrene S Cethosia myrina 9
FAM. NYMPHALID&A.
SUBFAM. DIONINZAS
5
169™* FASCICULE LEPIDOPTERA
(GENERA
INSECTORUM
DIRIGES PAR
}weonlan Insti,
|
P. WYTSMAN- “si
“onal Muse”
an aN
LEPIDOPTERA
RHOPALOCERA
FAM. NYMPHALID&
SUBFAM. ACREINA
by Dr K. JORDAN & Dr H. ELTRINGHAM
WITH 2 COLOURED PLATES
1916
-Prix : ER. 25,00
En vente pendant la guerre chez MARTINUS NIJHOFF, Libraire-Editeur 4 La Haye (Hollande).
Prospectus gratis et franco sur demande.
Secrétariat pendant la guerre : Dr. H. J. VeTH, 83, Sweelinckplein. La Haye (Hollande).
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
FAM. NYMPHALIDA
SUBFAM. ACREIN#
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
FAM. NYMPHALIDA
SUBFAM. ACRAINA
by Dr K. JORDAN & Dr H. ELTRINGHAM 1)
WITH 2 COLOURED PLATES
=» )LTHOUGH the Acreine are not an extensive group and, moreover, are confined to the
if: tropical countries, many are so common that more than 20 were already known at the
i end of the eighteenth century. Linnaeus and his successors classified them under
», Papilio Heliconius until Fabricius, in 1807, proposed for them the new generic term
Acraea, which, however, also included a species not allied to the others (dvassolis, a Pierine). The generic
term was adopted by subsequent authors (Latreille, Godart, Boisduval), with the exception of
Hibner, who placed the species in two genera of his own (Actimote and Telchinia).
During the first four decades of the nineteenth century several attempts at the classification of
the Butterflies were made, generally based on the European species only. Acraea, if mentioned at all,
being classified with Heliconius. It was in the middle of the century that for the first time a classification
was presented which took into account all the known forms of Lepidoptera. In Doubleday’s classical
work The Geneva of Diuynal Lepidopteva (1846-1852), famous for the detailed generic descriptions, the
Acraeae were raised to the rank of a family Acraeidae coérdinate with the Nymphalidae, Heliconidae, Papt-
lionidae, etc. This system, with slight alterations, was adopted by some of the later authors (for instance,
Schatz). Bates, however, recognising that the division of the Butterflies into a large series of coér-
dinate families did not give sufficient expression to the close relationship which undoubtedly existed
between some of these groups, proposed (1861) to divide the Butterflies into 5 families (Nymphalidae,
Evycinidae, Lycaenidae, Papilionidae, Hesperidae), his Nymphalidae comprising 6 subfamilies, the Acraeinae
coming first in order.
1) K. Jordan is responsible for the Introduction and the genera Actinole, Planema and Pardopsis. H, Eltringham
for Acraca.
2 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
The Nymphalidae in the Batesian sense are, indeed, distinguished by trenchant structural
differences from all the other Rhopaloceva, while the subdivisions of these Nymphalidae are, some more
and some less, closely related to one another. It is of little importance, whether the Batesian Nympha-
lidae are called a family and the subgroups subfamilies, or the former a superfamily and the divisions
families. The main point is this : the classification should emphasise that the whole series of Nymphalid
Butterflies forms one unit in contradistinction to other units of Rhopalocera.
Papilio Heliconius Linnzus, Syst. Nat. (ed. 10), p. 465 (1758) (partim); idem (ed. 12), p. 755
(1767) (partim) ; Fabricius, Syst. Ent. p, 459 (1775) (partim); idem, Ent. Syst. Vol. 31, p. 159
(1793) (partim).
Papilio Danaus Festivus Drury, Illustr. Exot. Ins. Vol. 3, Index (1782).
Acraea Fabricius, in Illiger, Mag. Ins. Vol. 6, p. 284 (1807) (partim); Latreille, Enc. Méth. Vol. 9,
p- 10 (1819).
Héliconides Boisduval, Spec. gén. Lép. Vol. 1, p. 165 (1836) (partim).
Heliconiidae Westwood, Intr. Modern Classif. Ins. Vol. 2, p. 351 (1840) (partim).
Acraeidae Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 137 (1848).
Acraeinae Bates, Journ. Ent. Vol. 1, p. 220 (1861).
Acraeidae Bates, Trans. Linn. Soc. Lond. Vol. 23, p. 495 (1862); Trimen, Rhop. Afr. Austr. p. 90
(1862) (partim).
Acraeinae Bates, Journ. Ent. Vol. 2, p. 176 (1864).
Heliconiadae Burmeister, Descr. Rép. Argent., Lép., Vol. 5, p. 50 & 110 (1878) (partim).
Acraeides Baer, Ann. Soc. Ent. France, p. 23 (1878).
Acraeinae Moore, Lep. Ceylon, Vol. 1, p. 65 (1881); Godman & Salvin, Biol. Centr.-Amer., Lep.
Rhop. Vol. 1, p. r40 (1881); Marshall & Nicéville, Butt. India, Vol. 1, p. 17 (1882); Smith, Bull.
Brooklyn Ent. Soc. (1883).
Acraeina Ploetz, Syst. Schmett. p. 5 (1885).
Acraeidae Doherty, Journ. Asiat. Soc. Bengal, Vol. 55, (2), p. 109 (1886).
Acraeinae Trimen, South Afr. Butt. Vol. 1, p. 128 (1887).
Acraeiden Schatz, Fam. Gatt. Tagf. p. ror (1887).
Acraeinae Kirby, in Allen’s Natural. Library, Butt. Vol. 1, p. 32 (1894); Reuter, Acta Soc. Fauna
& Flora Fennica, Vol. 22, (1), p. 422 (1896); Jordan, Novit. Zool. Vol. 5, p. 387 (1898); Auri-
villius, Svenska Vet.-Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 79 (1899); Sharp, Cambridge Nat. Hist..
Ins. Vol. 2, p. 350 (1899); Moore, Lep. Indica, Vol. 5, p. 29 (1901); Bingham, Fauna Brit.
India, Butt. Vol. 1, p. 468 (1905).
We follow Bates in regarding the Acraeinae and the coordinate groups of the Nymphalids
(Heliconiinae, Brassolinae, Danainae, etc.) as subfamilies of this large branch of Butterflies, all the subfa-
milies having in common a characteristic build of the antenne, thorax, legs and other organs, as well
as sharing peculiarities in the early stages not found in other divisions of the Butterflies.
Description. — Imago : The body is slender, the abdomen being long, tapering basad, and
usually projecting beyond the anal angle of the hindwing. The skeleton is tough in living examples,
but brittle in dry ones. The falpus (labial) is slender, the second segment being usually curved in
S-shape and frequently somewhat inflated, wereas the third segment is always very short. The scaling
of the palpus is usually restricted to the sides; a strip along the under side always is rough with erect
stiff bristles, most species also bearing such bristles on the outer side and that portion of the upper
side which is exposed. The hair-sales of the palpi and most of the hairs of the sterna and legs are
distally densely beset with short minute projections on all sides, such a hair, in optical section,
FAM. NYMPHALIDZE 3
recalling a feather. Moreover, many of these hairs are slightly, but distinctly, enlarged just before
tapering to a short sharp point, the apical portion of the bristle resembling a lance’s head. A slight
indication of « feather-hairs » occurs among the lower Nymphalines (Avgynnis and allies). The
antennae are only scaled on the upper surface, the scales being small, narrow, either dentate or simple,
and easily fall off; the last segment is always without scales, and in most of the Old World species the
scales are scarce on the segments which form the elongate club. The antennal segments are visibly
widened at the apex, the segmentation of the antenna therefore being quite distinct to the naked eye.
The non-scaled under side has the three carinze characteristic of all the Nymphalidae. The median carina
is either sharp or obtuse, the lateral carinze are always sharp and somewhat curved. The grooves
bounded by these carinz are deep proximally and shallow at the apex of the segments, and are reduced
to round pits (varying in size according to species or groups of species) on the segments of the club.
The anterior /egs are short, with few bristles; in the G both the fore tibia and tarsus are
variable in length individually, the fore tarsus frequently consisting of four distinct segments. This
tarsus is often almost without scaling and hairs, and never bears a long apical brush. In the 9 the fore
tarsus consists of four segments, which have ventrally at the apex strong spines and brushes of short
stiff tactile hairs. The mid and hind tibiz and tarsi have always numerous setiform bristles on the
upper and underside and are devoid (or nearly so) of scaling. The tibial spurs are short. The claws
have a large, broad and obtuse, basal tooth and are asa rule asymmetrical in the @, the outer claw
being reduced and the distal portion placed almost at right angles to the proximal portion. The pulvillus
and paronychium are so small as to be practically absent. The dorsal apical bristles of the fifth tarsal
segment are as stiffas spines and only about one-third the length of the inner claw.
The wings are always entire, there being no dentition at the ends of the veins anywhere. The
apex of the forewing is always obtuse, and the distal margin of the hindwing strongly rounded, the
anal angle being entirely effaced. The patch of modified scales at the base of the forewing, on the
underside, extends to the submedian vein, never to the submedian fold or the cell; the basal costal
angle of the hindwing is lobate. The scales in the proximal portions of the wings are always entire in
densely scaled species, sometimes the dentition occurring only in the marginal area and at the veins.
The fringe of the distal margin consists of deeply cleft scales, some of which have often lost all lobes
but one, resembling bristles, but usually bearing a notch somewhere beyond the middle as a remnant
of the second point of a bifid scale. There is no regular row of bristles in the fringe, as is the case in
Helicontinae. Similar bristles also are found on the veins, all intergradations occurring between a bifid
scale and a simple bristle. In some species all the veins bear long stiff bristles on the under side, in
others the bristles are confined to the abdominal area of the hindwing. The cell-fold of the hind-
wing (aborted proximal portion of the radial nervure) as well as the submedian fold are frequently
studded with bristles like the normal veins. There are no scent-tufts or cups or cushions of scent-
scales. The neuration is characterised in the forewing by the lower angle of the cell always being more
distal than the upper angle and by the median nervure having no spur near the base, and in the hind-
wing the precostal vein being curved distad, the cell always closed by a well developed cross-vein, the
upper radial branch originating close to or being stalked with the subcostal, and by the second cross-
vein being incurved. Moreover, in the forewing the subcostal branches 2 to 5 are always stalked
together, 5 being the most distal one, sometimes subcostal 1 also branches off from the stalk of the
others instead of from the cell.
The membrane on the inner side of the eighth abdominal segment of the o is very loose and has
a dense covering of scales. During copulation these scales become fixed to the 9, and when the speci-
mens separate, the membrane is torn away and remains on the body of the 9 as on outer covering of
the seal which closes the vaginal orifice of the Q.
4 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Early stages. — The Jarva is cylindrical and has six rows of spines, which bear simple, stiff
bristles. The head has no horns or spines, but only small hairs.
The fufa is straight, almost cylindrical, being usually but slightly more convex dorsally than
ventrally. The constriction separating the thorax from the abdomen is slight. There is a subdorsal
row of tubercles or spines on each side. The colour is generally a chalky white, the wing-veins being
outlined in black. The head is truncate, the angles being produced in Planema.
The egg is higher than broad and has perpendicular ribs connected by transverse ridges.
Systematics. — Until quite recently the Aethiopian Pardopsis punctatissima Boisduval (1833)
has always been considered as a true Acraeine species. It is, however, more closely related to the lower
Nymphalinae than to the Acraermae, and should he placed among the Nymphalinae as a special tribe. We only
add the species as an Appendix to the Acraeinae in order to avoid its being altogether forgotten in the
Geneva Insectorum.
The remaining species here enumerated are true Acraeinae. They belong to two distinct branches,
the Old World branch with the genera Acraea und Planema, and the American branch represented by
the genus Actinote. Whereas the American branch consists of several groups of species sharply defined
by structural detail in both sexes, an attempt to separate the large number of species of the Eastern
Hemisphere into more than two genera, based on relationship, meets with great difficulties.
The American branch has retained two ancestral characters in the row of bristles which, on the
hindwing, is always present on the submedian fold and frequently also on the cell-fold, and in the
submedian vein of the hindwing not being entirely atrophied. These characters are lost in the Old
World species with the exception of Acrvaea murifica, in which the submedian row of bristles is very
distinct and the submedian vein distally developed as in Actinofe. The same species has metallic scaling
on the underside of the hindwing, the other Old World species not being metallic (apart from the
iridescence of the wing-membrane of some species), whereas metallic colouring is quite frequent among
the American Acraeinae.
Distribution. — The subfamily is purely tropical, touching the Palearctic Region in the
Yang-tse-kiang district of China. The bulk of the species is Athiopian, a few species occurring in the
Oriental Region, one extending to the Solomon Islands. The American branch is almost entirely
restricted to South America, reaching southward to Buenos Aires and Rio Grande do Sul, Central
America having only a few species, two occurring in Mexico. The Andesian countries from Bolivia
northward (there are no Acvaeimae in Chile) to Mexico and eastwards to the Sierra de Mérida in Vene-
zuela are characterised by a group of bright-coloured or metallic species, which are not represented in
the countries east of the Andes. The paucity of Acraeinae in the Amazon Valley from Para to Iquitos and
in the Guianas is remarkable, no more than one species being met with in any place of this vast
country otherwise so rich in Lepidoptera.
KEY TO THE GENERA
A. The stalk of the subcostals of the forewing from the apex of the cell.
a. First submedian vein of hindwing (vein rc) distally fully developed
and upper vadial (vein 6) in both wings from or from near upper
gauge ges, o so 6 o» a 6 @ 68 o 6 5 6 6 6 5 o iy Comms Acmuons lshilioner,
b, First submedian vein of hindwing atrophied, or if developed
(A. mirifica) the upper radial distant from upper angle
of cell.
FAM. NYMPHALIDZ® 5)
b'. First subcostal of forewing from cell . . . . . 2. Genus Acraga Fabricius.
c'. First subcostal of forewing stalked with the other
SubCOSiaLS pa en GenusyerANE MAND cubledayyz.
B. The stalk of the subcostals much before the apex of the cell. . . . . 4. Genus Parpopsis Trimen.
|. GENUS ACTINOTE HUBNER
Papilio Heliconius Linnzus, Syst. Nat. (ed. 10), p. 465 (1758) (partim).
Acraea Fabricius, in Illiger, Mag. Ins. Vol. 6, p. 284 (1807) (partim).
Heliconius Latreille, in Humboldt & Bonpland, Rec. Observ. Zool. Vol. 2, p. 86 (1811) (partim).
Actinote Hiibner, Verz. bek. Schmett. p. 27 (1816-1817) (partim).
Acraea Godart, Enc. Méthod. Vol. 9, p. 231 (1819) (partim).
Acraea Sect. Actinote. Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142 (1848); Lucas, in Chenu, Enc.
Hist. Nat., Pap. Vol. 1, p. 80 (1851-1853).
Acraea Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 130 (1871) (partim); Burmeister, Descr. Rép. Argent., Lép., Vol. 5,
Pp- 129 (1878); F. Miller, Stett. Ent. Zeit. p. 296 (1878).
Actinote Godman & Salvin, Biol. Centr.-Amer. Lep. Rhop. Vol. 1, p. 140 (1881).
Acraea F. Miiller, Kosmos, Vol. 13, p. 197 (1883); idem, Zool. Anzeig. Vol. 6, p. 415 (1883);
Staudinger, Exot. Tagf. p. 81 (1885) (partim); W. Miiller, Zool. Jahrb., Syst. Vol. 1, p. 426
(7886).
Acraea 6. Actinote. Schatz, Fam. Gatt. Tagf. p. 103 (1887).
Actinote Kirby, in Allen’s Natural. Libr, Butt. Vol. 1, p. 38.(1894); Jordan, in Wagner, Lep. Cat.
Pt. 11, p. 1 (1913); idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 359 (1913).
Genotype : A. thalia Linnzus (1758).
Characters. — The genus is characterised by the palpus being black and not swollen, the upper
submedian vein (1 c) of the hindwing being developed as a real vein distally and bearing a row of stiff
bristles, as do all the other veins of the hindwing. The second discocellular is concave in both wings,
and the upper radial (vein 6) originates close to the subcostals or is stalked with them ; the first subcostal
of the forewing branches off from the cell. None of the species have the basal area of the wings dotted
with black, nor bear any of them marginal or submarginal lunules on the hindwing as is so frequently
the case in species of the eastern Hemisphere. On the other hand, a strong metallic blue and green gloss
occurs very often on the upper side.
The stile of colouring common to all the species of the thalia-section of Actinote is the more
primitive one, consisting in the main of black-brown stripes and bands on a deeper or lighter tawny or
ochraceous ground. These forms bear a more or less superficial resemblance to American Danainae. The
species of the meleus-section have a much more modified pattern and colouring of the upper side;
they resemble Nymphalinae of the genera Lyesia, Gnathotriche and Phyciodes, by which they are mimicked.
Early stages.— The larva and chrysalis are only known of a very few species. The species differ
among themselves in the length of the spines and in the colouring, but whether the early stages of the
genus as a whole present any constant differences from Acraea appears to be doubtful.
Systematics. — The genus consists of two main sections, which differ in the scaling of the
costal margin of the forewing. As this structural distinction, slight as it appeais at first sight, is
accompanied by different colouring, the two sections are undoubtedly two phylogenetic branches of the
6 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
genus. The species of the medews-section fall into natural groups, of which the abana-subsection is charac-
terised by the underside of the hindwing bearing stiff erect bristles not only on the veins, but also
scattered over the wing between the veins. In the melews-subsection the bristles are confined to the veins
and cell-fold A. hylonome and euryleuca slightly approach the abana-subsection in bearing a few additional
bristles in and below the cell. There exists possibly a species which bridges over the gap between hylonome
and abana as regards these bristles.
The neuration varies generally so much that it is of no great help in the classification of Actinote,
but in some instances small differences appear to be constant inclosely allied species, e.g.in A. melampeplos
and A. guatemalena, the lower cell-angle of the hindwing being much less produced in the former than in
the latter. It is also worthy of note that in the species which have a more or less red abdomen the upper
radial of the forewing (vein 6) is nearly always stalked with the subcostals instead of arising from the cell.
Geographical Distribution. — The ¢halia-section, which we consider more primitive, at any
rate in pattern, is the more widely distributed. It is most abundant in South-Eastern Brazil, but is also
represented by one species in the Amazon Valley, the Guyanas, Eastern Venezuela, Trinidad and
Tabago, while several species are found in the Andes northward to Nicaragua, one occurring in Mexico.
The thalia-section has evidently become distributed from Brazil proper via the Matto Grosso and Eastern
Bolivia.
The weleus-section is strictly confined to the Andes from Bolivia to Mexico, only one species being
found from Panama northward, none occur east of the Andes, the Sierra de Merida being the most
eastern district from which a species of this section is known. These interesting facts in the distribution
of the species of Actinote are further evidence in favour of our opinion that the classification of the
species in two sections corresponds to the phyletic development of the genus.
SECTION I, — The forewing beneath scaled between the costal margin and the apex
of the cell and the second subcostal vein.
A. — Hindwing beneath with dispersed stiff bristles between the veins.
1. Actinote radiata Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, t. 6, f. 39-41 (1868) (Acraea). Eastern slopes of
the Andes.
a. Actinote radiata radiata Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, t. 6, f. 39-41 (1868) (Acraea),.
Acraea radiata Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 67 (1871).
Actinote radiata Weymer, in Stiibel, Reise Stid-Amer. p. 82, no. 43, p. 72, no. 5 (1890).
Acraea radiata Dognin, Lép. Loja, Pt. 1, p. 9 (1887), Pt. 2, p. 34 (1891).
Actinote radiata subsp, radiata Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinote radiata vadiata Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 360, t. 81a (1913).
East Ecuador, North Peru.
b. Actinote radiata intensa Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 463, no. 10 (1910). — le 5 Fig. 12.
Actinote radiata subsp, tntensa Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinote radiata intensa Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 360 (1913).
Eastern Peru.
2. Actinote erinome Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 5, p. ror, no. 71 (1861) Ecuador (?), Peru,
(Acraea). Bolivia.
a, Actinote erinome erinome Felder, ibidem, Vol. 5, p. ror, no. 71 (1861) (Acraea).
Acraea ervinome Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 66 (1871); Druce, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 218, no. 8
(1876).
Actinote erinome subsp. erinome Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinote evinome evinome Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 360, t. 81a (1913).
ab. sciana Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 463, no. 9 (1910) (Actinote erinome erinome ab.); idem, in Wagner,
Lep. Cat. Pt.11, p. 4 (1913); idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 360 (1913).
Ecuador ?, Central East Peru.
FAM. NYMPHALIDA@ 7
6. Actinote erinome carabaia Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 463, no. 8 (1910).
Actinote erinome subsp. carabaia, Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinote erinome erinome Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 360 (1913)
South-Eastern Peru.
c. Actinote erinome testacea Salvin & Godman, Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 2. p. 144, no. 7 (1868) (Acraea).
Acraea testacea Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 75 (1871).
Acraea byzia Hewitson, Boliv. Butt. p. 5 (1874).
Acraea aethilla Hopfter, Stett. Ent. Zeit. Vol. 3
(1877);
Acraea byzia Kirby, ibidem, p. 719, no. 84(1877); Weeks, Illustr. diurn. Lep. p. 28 (1905).
Actinote erinome subsp. testacea Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinoae erinome testacea Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 360, t. 81a (1913).
5, p- 347, no. 40 (1874); Kirby, Cat. diurn, Lep. p. 718, no. 78
Bolivia.
3. Actinote abana Hewitson, Exot, Butt. t. 6, f. 35-36 (1868) (Acraea). Ecuador, Colombia to
Peru.
a. Actinote abana capnodes Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 360 (1913).
Colombia.
6. Actinote abana abana Hewitson, Boliv. Butt. p. 5 (1874).
Acraea abana Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 70 (1871); Dognin, Lép. Loja, Pt. 1, p. 9(1887) & Pt.2,p 34
‘t891).
Actinote abana Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinote abana abana Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 360, t. 81@ (1913).
Ecuador, Peru.
B. — Hindwing beneath without stiff bristles between the veins on the disc.
4. Actinote hylonome Doubleday, Ann. Mag. Nat. Hist. Vol. 14, p. 418 (1844) Venezuela, Colombia.
(Euterpe).
7
Acraea (sect. Actinote) hylonome Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142, no. 43, t. 18, fig. 3 (1848).
Acraea hylonome Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 65 (1871); Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885) ;
Hahnel, Iris, Vol. 3, p. 195 (1890); Weymer, in Stiibel, Reise Stiid-Amer. p. 21, no. 42 (1890).
Actinote hylonome Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 7 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett.Vol. 5, p. 360,
t. 82d (1913).
5. Actinote euryleuca Jordan, Novit. Zool. Vol.17, p. 464,no. 15(1910). — Pl. 2, North Peru.
Fig. Il.
Actinote euryleuca Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt, 11, p. 7 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5,
p. 360, t. 826 (1913).
6. Actinote neleus Latreille, in Humboldt & Bonpland, Rec. Obs. Zool. Vol. 2, Colombia, Ecuador,
p. 86, no 125, t. 36, f. 7-8 (1811) (Heliconius). North Peru.
Acraza nelea Godart, Enc. Méth. Vol. 9, p. 241, no. 37 (1819).
Acraea (sect. Actinote) nelea Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142,n0.45 (1848).
Acraca neleus Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 69 (1871).
2 Acraea ara Hewitson, Equat. Lep. p. 88 (1877); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 847. no. 122 (1877).
Acraza neleus Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885); Dognin, Lép. Loja, Pt. 1, p. 9 (1887).
Acraea ara Dognin, ibidem, p. 9 (1887).
Acraca neleus Weymer, in Stiibel, Reise Siid-Amer. p. 35, no. 14, p. 53, no. 27, p. 62, no. 44, p. 77, no. 8 (1890).
2 Acraea edulis Weymer, ibidem, p. 62, no. 42, p. 73, no. 6, p. 114, no. 20. t. 2,f. 11 (1890).
Acraca neleus Dognin, Lép. Loja, Pt. 2, p. 34 (1891).
Acraeaara Dognin, ibidem, p. 34 (1891),
Acraea edulis Dognin, ibidem, p. 34 (1891).
Acraea nelea Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 54 (1893).
Actinote neleus Therese, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 46, p. 252, no. 51(1901); Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11,
p. 8 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 361, t. 810, ¢ (1913).
7. Actinote alcione Hewitson, Exot. Butt. t. 1, f. 7 (1852) (Acraea). Colombia to Bolivia.
a. Actinote alcione varians Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 464, no. 14 (1910).
Actinote alcione subsp. varians Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
8 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Actinote alcione varians, Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 361 (1913).
f. cyanea Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 361 (1913).
f. varvians Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 361 (1913).
. extensa Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 361 (1913).
foal
+b. Actinote alcione elatus Druce, Ann. Mag. Nat. Hist. (7), Vol. 12, p. 220 (1903).
Actinote alcione subsp, elatus Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinote alcione elatus Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 361 (1913).
Paramba, West Ecuador.
c. Actinote alcione sarsanda Druce, Ann. Mag. Nat. Hist. (7), Vol. 12, p. 220 (1903). — Pl. 2, Fig. 13.
Actinote alcione subsp. sarsandra (!) Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinote alcione sarsanda Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 361, t. 82d (1913).
Chimbo, Western Ecuador.
d. Actinote alcione subelatus Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 361, t. 81¢ (1913).
Los Llanos and Balsapamba, Ecuador.
e. Actinote alcione melina Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 464, no. 13 (1910).
Actinote alcione subsp. melina Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote alcione melina Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol, 5, p. 361 (1913)
North Peru.
f. Actinote alcione alcione Hewitson, Exot. Butt. Vol. 1, t. 1, f£.7 (1852) (Acraea).
Acraea alcione Westwood, in Doubleday & Westwood, Gen. diurn. Lep. Vol. 2, p. 531 (1852).
Acraea alcyone (!) Kirby, Cat. diurn, Lep. p. 137, no. 72 (1871).
(2) Acraea alcyone Dognin, Lép. Loja, Pt. 1, p. 9 (1887) & Pt. 2, p. 34 (1891).
Actinote alcione subsp. alcione Jordan in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913).
Actinote alcione alcione Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362, t. 82d (1913).
East Ecuador, North Peru.
g. Actinote alcione salmonea Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 464, no. 12 (1910).
Actinote alcione subsp. salmonea Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote alcione salmonea Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362 (1913).
North Peru.
h.
Actinote alcione sodalis Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 20, p. 119, no. 8 (1877).
Actinote sodalis Kirby, in Allen’s Natural. Libr., Butt. Vol. 1, p. 40, t. 37, f. 4 (1894).
Actinote alcione subsp. sodalis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote alcione sodalis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362, t. 81d (1913).
East Peru.
7. Actinote alcione messeres Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 463, no. 11 (1910).
Actinote alcione subsp. messeres Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote alcione messeres Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362 (1913).
South-East Peru.
J. Actinote alcione corduba Hewitson, Boliv. Butt. p. 6 (1874) (Acraea),
Acraea corduba Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 719, no. 86 (1877).
Actinote alcione subsp. corduba Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote alcione corduba Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362, t. 810 (1913).
Bolivia,
k. Actinote alcione theophila Dognin, Le Naturaliste (2), Vol. 1, p. 173, f. 34 (1888) (Acraea).
Acraea theophila Dognin, Lép. Loja, Pt. 2, p. 34 (1891).
Actinote alctone subsp. theophila Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote alcione theophila Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362, t. 81¢ (1913) (am spec. distincta ?).
South-East Ecuador, North East Peru.
8. Actinote leucomelas Bates, Ent. Monthly Mag. Vol. 1, p. 59, no. 32 (1864) Mexico to Panama.
(Q, Acraea).
O Acraea nox Bates, Ent. Monthly Mag. Vol. 1, p. 59, no. 33 (1864).
Acraea orizava Reakirt, Proc. Acad. Nat. Sc. Philad. p. 2
Acraea nox Kirby, Cat. diurn, Lep. p. 137 no. 68a (1871).
FAM. NYMPHALIDA® 9
Acrasa leucomelas Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 696 (1871).
Acraea leucomelaena Dewitz, Mitt. Miinch, Ent. Ver. Vol. 1, p. 88, footnote (1877).
Actinote nox Godman & Salvin, Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 142, no. 4, t. 16, f. 3, 4, 6, 5, 6, 2 (188x).
Acraea nox Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82, t. 32, GO (1885); Schatz, Fam. Gatt. Tagf. p. 103, t. 13
(1887); Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 54 (1893).
Actinote nox Godman & Salvin, Biol. Centr. Amer. Lep. Rhop. Vol. 2, p. 667 (1901).
Actinote leucomelas Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 8 (1913); idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5,
p- 362, t. 81d (1913).
g. Actinote ozomene Godart, Enc. Méth. Vol. 9, p. 241, no. 36 (1819) (Acraea). Colombia, Ecuador.
a. Actinote ozomene ozomene Godart, Enc. Meth. Vol. 9, p. 241, no. 36 (1819) (Acraea).
Acraea ozonome Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. Thy hy Ash, tl 2 (CEVA),
Acraea (sect. Actinote) ozomene Doubleday, ibidem, Vol. 1, p. 142, no. 44 (1848).
Acraea ozomene Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 68 (1871); Weymer, in Stttbel, Reise Stid-Amer. p. 35,
no. 131, p 37, no. 9 (1890).
Actinote ozomene Therese, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 47, p. 251 (1901); Rebel, ibidem, p. 295, t.4, f. 7, o
8, 2 (1901).
Actinote ozomene subsp. ozomene Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. rr, p. 9 (1933).
Actinote ozomene ozomene Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362, t. 81e, f (1913).
ab. calimzne Rebel, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 46, p 295 (1901); Jordan, in Seitz, Grossschmett.Vol.5, p. 362 (1913).
ab. granadina Rebel, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 46, p. 295 (rg0r); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362
(1913).
ab. reducta Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 362 (1913).
Central and West Colombia.
)
b. Actinote ozomene cleasa Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, t. 6. f. 37, 38 (1868) (Acraea).
Acraea cleasa Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 68¢ (1877); Dognin, Lép. Loja, Pt. 1, p. 9 (1887) & Pt. 2,
p- 34 (1891).
Acraea ozomene Godman & Salvin, in Whymper, Andes, Suppl. p. 99, no. 24 (1891).
Actinote ozomene catopasta Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 464, no. 16 (1910).
Actinote ozomene subsp. cleasa Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 2, p. 9 (1913).
Actinote ozomene cleasa Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362 (1913).
Ecuador : Chimbo, Zaruma, Zamora.
c. Actinote ozomene gabrielae Rebel, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 46, p. 295 (1901).
Actinote ozomene subsp. gabrielae Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 9 (1913).
Actinote ozomene gabrielae Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 362 (1913).
Western Ecuador : Paramba, Balsapamba, Agua Santa.
10. Actinote stratonice Latreille, in Humboldt & Bonpland, Rec. Obs. Zool. Venezuela to North
Vol. 2, p. 92, no. 129, t. 37, f. 7, 8 (1811) (Heliconiis). Rens
a. Actinote stratonice meridana Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 465, no. 17 (1910).
2 Acraea stratonice Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 5. p. 102, no. 72 (1861).
Actinote stratonice subsp. meridana Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 9 (1913).
Actinote stratonice mertdana Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 363 (1913).
Mérida, Venezuela.
b. Actinote stratonice marthae Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 465. no. 18 (1910).
Actinote stratonice subsp. marthae Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 9 (1913).
Actinote stratonice marthae Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 363 (1913).
Santa Marta, Colombia.
c. Actinote stratonice acipha Ilewitson, Exot. Butt. Vol. 2, t. 2. f. 8 (1861) (Acraea).
Actinote stvatonice var. acipha Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 59a(1871).
Acraea stratonice Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885) (partim ?).
Acraea acipha Weymer, in Sttibel, Reise Stid-Amer. p. 17, no. 13, p. 20, no. 40, b @ (1890).
Actinote acipha Therese, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 46, p. 251. no. 47 (1901).
Actinote stratonice subsp. acipha Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 9 (1913).
Actinote stratonice acipha Jordan. in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 363, t. 82a, b (1913).
Eastern Colombia.
io) LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
d. Actinote stratonice stratonice Latreille, in Humboldt & Bonpland, Rec. Obs. Zool. Vol. 2, p. 92, no. 129,
t. 37, f. 7-8 (1811) (Heliconius).
Acraea stvatonice Godart, Enc. Méth. Vol. 9, p. 241, no. 34 (1819).
Acraea (sect. Actinote) stratonice Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142, no. 41 (1848).
Acraea stratonice Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 59 (1871) (partim); Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82
(1885) (partim?).
Actinote acipha Moulton, Trans. Ent. Soc. Lond. t. 33, f. 10-11 (1909).
Actinote stratonice subsp. stratonice Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 10 (1913).
Actinote stvatontce stratonice Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 363, t. 82a (1913).
Central and West Colombia, West Ecuador.
e. Actinote stratonice diversa Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 363 (1913).
East Ecuador : R. Pastaza.
f. Actinote stratonice aereta Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 32, no. 5 (1913).
Actinote stratonice subsp. aereta Jordan,in Wagner, Lep. Cat, Pt. 11, p. 10 (1913).
Actinote stratonice aeveta Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 363 (1913).
South-East Ecuador : Zamora.
11. Actinote adoxa Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 465, no. 19 (1910). Bogota.
Actinote adoxa Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 4 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5,
p. 463 (1913).
Venezuela, Colombia,
12. Actinote callianthe Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 6, p. 417,
Ecuador.
no. 122 (1862) (Acraea).
a. Actinote callianthe alla Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 465, no. 20 (1910).
Actinote callianthe subsp. alla Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote callianthe alla Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 364 (1913).
Merida.
b, Actinote callianthe callianthe Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 6, p. 417, no. 122 (1862) (Acraea).
Acraea callianthe Felder, Reise Novara, Lep. t. 46, f. 6-7 (1865); Felder, ibidem, p..375, no. 537 (1867); Kirby,
Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 64 (1871); Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885).
Actinote callianthe subsp. callianthe Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt.11, p. 5 (1913).
Actinote callianthe callianthe Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 364, t. 81d. 82b (1913).
East Colombia.
c. Actinote callianthe amoena Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 364 (1913).
Actinote callianthe callianthe Jordan, ibidem, t. 81d, 2 (1913).
West Colombia.
d. Actinote callianthe rufa Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 465, no. 21 (1910).
Actinote callianthe subsp. rufa Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote callianthe vufa Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 364 (1913).
Zamora, Ecuador.
13. Actinote naura Druce, Cist. Ent. Vol. 1, p. 358 (1875) (Acraea). Venezuela, Colombia.
a. Actinote naura naura Druce, ibidem, Vol. 1, p. 358 (1875) (Acraea).
Acraea naura Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 719, no. 104 (1877).
Acraea ozinta Schaus, Proc. U. S. Nat. Mus. Vol. 24, p. 391 (1902).
Actinote naura subsp. maura Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 8 (1913).
Actinote ozinta Jordan, ibidem, p. 9 (1913).
Actinote naura naura Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 364 (1913).
Venezuela.
b. Actinote naura chea Druce, Ann. Mag. Nat. Hist. (7), Vol. 12, p. 220 (1903).
Actinote naura subsp. chea Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 8 (1913).
Actinote naura chea Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 364, t. 81h (1913).
Colombia.
FAM. NYMPHALIDA II
14. Actinote trinacria Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 6, p. 417, no. 121 Colombia.
(1862) (Acraea)
Acraea irinacria Felder, Reise Novara, Lep. t. 46, f. 2-3 (1865); Felder, ibidem, p. 371, no. 536 (1867); Kirby,
Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 60 (1871).
Actinote trinacria Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 54 (1893); Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11. p. 10(1913) ;
Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 364, t. 81a (1913).
15. Actinote tenebrosa Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, t. 6, f. 33, 34 (1868) East Ecuador.
(Acraea).
Acraea tenebrosa Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 137, no. 71 (1871); Dognin, Lép. Loja, Pt. 2, p. 34 (1891).
Actinote tenebrosa Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 10 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5,
p. 364, t. 82a (1913).
Acraea segesta Weymer, in Stiibel, Reise Stid-Amer. p. 62, no. 46, p. 114, no. 19, t. 3, f. (1890).
Acraea dognint Schaus, Proc. U. S. Mus. Vol. 24, p. 391 (1902).
Actinoie segesta Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 9 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol.5, p. 364,
t. 826 (1913).
16. Actinote flavibasis Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 32, no. 3 (1913) East Colombia.
(Actinote diceus flavibasis). :
Actinote diceus subsp. flavibasis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 6 (1913).
Actinote flavibasis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p, 364, t. 81g, S (1913).
Actinote ozomene Jordan, in Seitz, ibidem, Vol. 5, p. 364, t. Sze, f. 4, 2 (1913).
ab. fasciata Jordan, ibidem, p. 365 (1913).
17. Actinote diceus Latreille, in Humboldt & Bonpland, Rec. Obs. Zool. Venezuela to Peru.
Vole25P-) 1305) 00, Toon ity 254 SaaS) (elelzcorezs))
a. Actinote diceus amida Hewitson, Trans. Ent. Soc. Lond. (2), Vol. 2, p. 245, t. 22, f. 2 (1854) (Acraea).
Acraza amida Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 63a (1871); Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885);
Hahnel, Iris, Vol. 3, p. 195 (1890).
2 Acraea theogonta Weymer, in Stiibel, Reise Stid-Amer. p. 21, no. 41, p. 115, no. 21, t. 2, f. 13 (1890).
Actinote amida Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 54 (1893).
Actinote callianira subsp. amida, Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Acttinote diceus amida Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 365, t. 81h (1913).
Venezuela, Eastern Colombia.
b. Actinote diceus diceus Latreille, in Humboldt & Bonpland, Rec. Obs. Zool. Vol. 2, p. 130, no, 155, t. 42,
f. 3, 4 (1811) (Heliconius).
Acraea dice Godart, Enc. Méth. Vol. 9, p. 241, no. 5 (181g) (partim).
Acraea (sect. Actinote) dice Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1. p. 142, no. 42 (1848).
Acraea diceus Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 61 (1871).
Acraea aurantia Weymer, in Stiibel, Reise Siid-Amer. p. 45, sub no. 12, p. 112, no. 16 (1890).
S Actinote olgae Therese, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 46, p. 252, no. 50 (1901) (indescr.) ; Rebel, ibidem, p. 295, t. 5,
f. g, 10 (Igor).
2 Actinote albofasciata Therese (nec Hewitson, 1869), ibidem, p. 251, no. 48 (1901); Rebel, ibidem, p. 293, t. 4,
f. 6 (1901).
Aclinote diceus subsp. diceus Jordan in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 6 (1913).
Actinote diceus diceus Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 365, t. 81f (1913).
f. sinefascta Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 365 (1913).
f confluens Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 365 (1913).
f. diceus Jordan, ibidem. Vol. 5, p. 365 (1913).
G ab, rubrosticta Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 365 (1913).
Central and West Colombia, North-West Ecuador.
c. Actinote diceus napensis Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 467, no. 22 (1910) (A. dice nap.).
Actinote diceus subsp, napensis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 6 (1913).
Actinote diceus napensis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 365 (1913).
Ecuador: Rio Napo.
d. Actinote diceus albofasciata Hewitson, Equat. Lep. p. 23, no. 41 (1869) (Acraea). —Pl. 2,Figs. 7 & 10.
Acraca albofasciata Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no, 65bis (1871); Dognin, Lép. Loja, Pt. 1, p. 9 (1887).
? Acraea corduba Dognin, ibidem, Pt. 2, p. 34 (1891).
12 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Acraea yosaria WWeymer, in Stiibel, Reise Stid- Amer. p. 53, no. 28, p. 52, no, 45, p.112, no. 17, t, 3, f. 3 (1890).
Acraea albofasciata Weymer, in Stiibel, Reise Sud-Amer. p. 62, no. 41 (1890); Dognin, Lép. Loja, Pt. 3, p. 71
(1894).
Acraea diceus Weymer, in Stiibel, Reise Siid-Amer. p- 73, no. 5 (1890).
Actinote yosarta Haensch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 48, p 153 (1903).
Acraea diceus subsp. albofasciata Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 6 (1913).
Acraea diceus albofasciata Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 365, t. 81g, O (1913).
South-East Ecuador.
e. Actinote diceus carica Weymer, in Stiibel, Reise Siid-Amer. p. 73, no. 4, p. 74, no. 5, p. 113, no. 18,t. 3, fig. 6
(1890) (Acraea stratonice var.)
Q Acraea thespias Weymer, ibidem, p. 73, no. 7, p. 115, no. 22, t. 2, f. 12 (1890).
Actinote callianiva subsp. thespias Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote diceus thespias Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 365 (1913).
Actinote stratonice subsp. carica Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 10 (1913).
Actinote stratonice carica Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, }. 363 (1913).
North Peru.
/. Actinote diceus callianira Hiibner, Zutr. Exot. Schmett. Pt. 5, p. 14, no. 423, f. 845, 846 (1837).
» Acraea callianira Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 63 (1871); Druce, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 218, no. 7
(1876); Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885 (partim).
Acraea 6. Actinote callianiva Schatz, Gatt. Tagf. p. 103 (1887).
Actinote callianira Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 54 (1893).
Actinote callianira subsp. callianiva Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote callianira Dyar, Proc. U. S. Nat. Mus. Vol. 45, p. 630 (1913).
Actinote diceus callianira Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 365, t. 81/ (1913),
ab. stenia Jordan, Novit. Zool. Vol 17, p. 467, n0. 26 (1910) (A. callianira stenia).
Actinote callianira subsp. stenia Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 6 (1913).
Actinote diceus callianira ab, stenta Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 365 (1913).
Central-East Peru.
g. Actinote diceus euris Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 466, no. 25 (1910).
Acraea callianiva Staudinger (nec Htibner, 1837), Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82, t. 32 (1885) (fig. mala).
Actinote callianira subsp, euris Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p.6 (1913).
Actinote diceus euris Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 365 (1913).
South-East Peru.
18. Actinote jucunda Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 466, no. 24 (1910). Bolivia.
Actinote jucunda Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 7 (1913); idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5,
p. 365, t. 81h (1913).
19. Actinote griseata Butler, Cist. Ent. Vol. 1, p. 170 (1873). Central East Peru.
Acraea griseata Druce, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 218, no. 4 (1876).
Acraea aliteria Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 346, no. 38 (1874), and Vol. 40, p. 425, no. 161 (1879).
Acraea griseata Kirby, Cat. diurn, Lep. p. 719, no. 95 (1877).
Actinote griseata Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p.7 (1913); idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5. p. 366,
t. 810 (1913); Dyar, Proc. U. S. Nat. Mus. Vol. 45, p. 630 (1913).
20 Actinote anaxo Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 347, no. 39 (1874) Peru.
(Acraea).
a. Actinote anaxo anaxo Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 347, no. 39 (1874) (Acraea).
Acraea anaxo Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 718, no. 81 (1877).
Actinote anaxo subsp. anaxo Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinote anaxo anaxo Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 366 (1913).
Chanchamayo, Pereneé.
b. Actinote anaxo comta Jordan, Novit Zool. Vol. 17, p. 466, no. 23 (1910).
Actinote anaxo subsp. comta Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 5 (1913).
Actinole anaxo comta Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 366, t. 82d (1913).
Cuzco.
FAM. NYMPHALIDZ 13
21. Actinote hilaris Jordan, Novit. Zool. Vol.17,p.467, no.27 (1910). —PI.2,Fig.5. East Peru.
Actinote hilaris Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p.7 (1913); idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 366,
t. 82a (1913).
22. Actinote amphilecta Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 366 (1913). East Ecuador.
23. Actinote eresia Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 6, p. 417, no. 120 Colombia to Bolivia.
(2862) (Acraea).
a. Actinote eresia eresia Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 6, p. 417, no. 120 (1862) (Acraea).
Acraea eresia Felder, Reise Novara, Lep. t. 46, f. 4, 5 (1865), and ibidem, p. 370, no. 534 (1867); Kirby,
Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 62 (1871).
Actinote cresia subsp. evesia Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 7 (1913).
Actinote eresia eresia Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 366, t. 82d (1913).
Colombia.
5. Actinote eresia leptogramma Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 32, no, 1 (1913).
Actinote eresia subsp. leptogramma Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 7 (1913).
Actinote eresia leptogramma Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 366, t. 82¢ (1913).
Actinote eresia leptoneura Dyar (laps. cal.), Proc. U. S. Nat. Mus. Vol. 45, p. 630 (1973).
East Ecuador.
¢. Actinzte eresia binghamae Dyar, Proc. U. S. Nat. Mus. Vol. 45, p. 630 (1913) (Actinote binghamae).
San Miguel, Peru.
ad. Actinote eresia eresina Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 347, no. 41 (1874) (Acraea).
Acraca eresina Hopfter, ibidem, Vol. 35, p. 347, no. 41 (1874) (Acraea); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 710, no. 92
(1877).
Actinote evesia Weeks nec Felder, (1862), Illustr. diurn. Lep. p. 31 (1905).
Actinote evesia subsp. eresina Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 7 (1913).
Actinote eresia eresina Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p 366, t. 82¢ (1913).
East Peru, Bolivia.
24. Actinote desmiala Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 32, no. 2 (1913). East Ecuador.
Actinote desmiala Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 6 (1913); idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5,
Pp. 367 (1913).
25. Actinote laverna Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol.1,t.18,f 3(1847)(Acraea). Venezuela.
Acraea (sect. Actinote) laverna Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142, no. 40 (1848).
Acraea laverna Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 58 (1871); Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885)
(partim).
Aclinote laverna Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 54 (1893); Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 7 (1913);
idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 367, t. 82¢ (1913).
25. Actinote leontine Weymer, in Stiibel, Reise Siid-Amer.p.48,no.3,p.112, Ecuador, North Peru.
no. 15, t. 3, f. 4 (18g0) (Acraea).
a. Actinote leontine leontine Weymer, in Stiibel, Reise Sid-Amer. p. 48, no. 3, p. 112, no. 15, t. 3, f 4 (1890)
(Acraea), 2.
Actinote leontine subsp. leontine Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 7 (1913).
Actinote leontine leontine Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 367 (1913).
North and East Ecuador,
4. Actinote leontine bulis Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 32, no. 4 (1913).
Acraca laverna Dognin (nec Doubleday, 1847), ep, Loja, Pt. 1, p. 9 (1887) & Vol. 2, p. 34 (1891).
Actinole leontine subsp. bulis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p, 7 (1913).
Actinote leontine bulis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 367, t. 82¢ (1913).
South-East Ecuador.
14 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
c. Actinote leontine catochaera Jordan, Novit. Zool. Vol. 17 p. 468, no. 31 (1910).
Actinote leontine subsp. catochaera Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 8 (1913).
Actinote leontine catochaera Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 367, t. 82¢ (1913).
North Peru (San Pablo), South Ecuador (Cuenca).
d. Actinote leontine hypsipetes Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 469, no. 30 (1910).
Actinote leontine subsp. hypsipetes Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11. p. 7 (1913).
Actinote leontine hypsipetes Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 367 (1913).
Cajamarca, North Peru.
27. Actinote negra Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 6,p.78, no. 64 (1862) (Acvaea). Ecuador, Peru.
a. Actinote negra euclia Dognin, Le Naturaliste (2), Vol. 1, p. 174, f. 4 (1887) (Acraea).
Acraea euclia Dognin, Lép. Loja, Pt. 2, p. 34 (1891).
Actinote negya subsp. euclia Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 8 (1913).
Actinote negra euclia Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 368 (1913).
Loja.
b. Actinote negra negra Felder, Wien, Ent. Monatschr. Vol. 6, p. 78, no. 64 (1862).
Actinote laverna var. negra Kirby. Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 58a (1871).
Acraea laverna var. negra Weymer, in Stiibel, Reise Siid-Amer. p. 76, no. 7 (1890).
Actinote negra subsp. negra Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 8 (1913).
Actinote negya negra Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5. p. 368 (1913).
North Peru.
28. Actinote momina Jordan, Novit. Zool. Vol.17,p. 469,no.33(1g10).—PI.2,Fig.6. East Peru.
Actinote mamina(!) Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 8 (1913).
Actinote momina Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 368, t. 82e (1913).
29. Actinote demonica Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 345, no. 34 (1874) Ecuador to Bolivia.
(Acraea).
a, Actinote demonica scotosis Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 468, no. 30 (1910).
Acraea nicylla Dognin (nec Hopffer, 1874), Lép. Loja, Pt. 1, p. 9 (1887) & Pt. 2, p. 34 (1891).
Actinote demonica subsp. scotosis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 6 (1913).
Actinote demonica scotosis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 368 (1913).
South-East Ecuador.
». Actinote demonica sobrina Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 467, no. 29 (1910).
Actinote demonica subsp. sobrina Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 7 (1913).
Actinote demonica sobrina Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 368 (1913).
North Peru.
c. Actinote demonica demonica Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 345, no. 34 (1874).
Q Acraea demonica Hopffer, ibidem Vol. 35, p. 345, no. 34 (2) (1874), and Vol. 40, p. 422, no. 157 (1879).
Acraea nicylla Druce, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 218, no. 6 (1876).
GS Acraea nicylla Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 34, p. 346, no. 37 (1874), and Vol. 40, p. 422, no. 157 (1879).
Acraea demonica Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 719, 10. 89 (1877).
Acraea nicylla Kirby, ibidem, p. 719, no. 105 (1877); Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885).
Actinote nicylla Haase, Unters. Mim. Vol. 2. p. 54 (1893).
Actinote demonica subsp. demonica Jordan. in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 6 (1913).
Actinote demonica demonica Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 368, t. 82b, ¢ (1913).
Actinote nicylla Dyar, Proc. U. S. Nat. Mus. Vol. 45, p. 630 (1913).
Q f. auvantia Jordan, in Seitz, ibidem, Vol. 5, p. 368, t. 82, ¢ (1913).
Q f. intermedia Jordan, in Seitz, ibidem, Vol. 5, p. 368, t. 820, ¢ (1913).
Q f. demonica Jordan, in Seitz, ibidem, Vol. 5, p. 368, t. 820, ¢ (1913).
+
East Peru, Bolivia.
FAM. NYMPHALIDZ 15
SEcTION IT, — The forewing beneath with bristles instead of scales at and near the costal
margin from about the centre outwards.
30. Actinote anteas Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, t. 18, f. 5 (1847) Guatemala to Vene-
(Acraea). zuela, Tabago Island.
Acraea (sect. Actinote) anteas Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142, no. 39 (1848).
Acraea anteas Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 57 (1871).
Acraca thalia Butler & Druce (nec Linnzus, 1758), Proc. Zool. Soc. Lond. p. 352, no. 244 (1874) (partim).
Actinote anteas Distant, Proc. Ent. Soc. Lond. p. 14 (1876); Godman & Salvin, Biol. Centr, Amer, Rhop. Vol. 1,
Pp. I4I, no. x, t. 16, f. x (18Sz).
Acraea anteas Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885) (partim); Weymer, in Stiibel, Reise Siid-Amer.
p. 16, no. 2, p. 20, no. 39 (1890).
Acraea thalia Weymer, in Stiibel, Reise Siid-Amer. p. 37, no. 7 (1890).
Actinote anteas Godman & Salvin, loc. con. Vol. 2, p. 666 (1901); Therese, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 46, p. 250
no. 46 (1901); Longstafi, Butt. Hunting, p. 305, 306, 310, 314, 323, 509, 519 (1912); Jordan, in Wagner,
Lep. Cat. Pt. 11, p. 10 (1913); idem, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 368, t. 83¢ (1913).
holochroa Jordan, ibidem, p. 369 (1913).
ochrotaenta Jordan, ibidem, p. 369 (1913).
anteas Jordan, ibidem, p. 369 (1913).
straminosa Jordan, ibidem, p. 369 (1913) (Mérida).
rh Rh Fh orn
31. Actinote thalia Linnzus, Syst. Nat.(ed.10),p.467,no.53(1858)(Syn.ex parte; Surinam to British
Papilio Heliconius). — Pl. 2, Fig. 4. Guiana.
Papilio Heliconius thalia Clerck, Icon. Ins. t. 43, f. 2 (1764); Linneus, Mus. Lud. Ulr. p. 230, no. 49 (1764);
idem, Syst. Nat. (ed. 12), p. 757, no. 67 (1767); Fabricius, Syst. Ent. p. 463, no. 88 (1775); Goeze, Ent.
Beytr. (3), Vol. 1, p. ror, no. 67 (1779); Cramer, Pap. Exot. Vol. 3, p. 88, t. 246, f. A (1779); Fabricius,
Spec. Ins. Vol. 2, p. 31, no. 130 (1781); idem, Mant. Ins. Vol. 2, p. 15, no. 151 (1787); Gmelin, Syst.
Nat. (1), Vol. 5, p. 2254, no. 67 (1890); Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 4, p. ror, no. 9, t. 68, f. 7 (1790);
Stoll, in Cramer, Pap. Exot. Suppl. p. 6, t. 1, f. 6A,6B (1791); Fabricius, Ent. Syst. Vol. 3, Pt. 1,
p- 171, no. 532 (1793). ‘
Papilio Burbarus txilion Linneus, Syst. Nat. (ed. 10), p. 488, no. 191 (1758).
Actinote thalia Hiibner Verz. bek. Schmett p. 27, no. 209 (1816-1817).
Acraea thalia Godart, Enc. Méth. Vol. 9, p. 240, no. 33 (181g) (partim) ; Lucas, Lép. Exot. p. ror, t. 52, f. 3
(1835) (partim).
Acraea (sect. Actinote) thalia Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142, no. 38 (1848) (partim).
Acraza thalia Felder, Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 12, p. 475, sub no. 36 (1862).
Actinote thalia Butler, Cat. diurn. Lep. descr. Fabr. p. 135, no. 53 (1869) (partim).
Acraza thalia Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 135, no. 53 (1871) (partim).
Acraea anteas Méschler (nec Doubleday, 1847), Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 26, p. 315 (1876).
Acraea acton (Herrich-Schiaffer, ¢. 1.) Mdschler, ibidem, Vol. 26, p. 315 (1876).
Acraca (Actinote) thalia Aurivillius, Recens. crit. Lep. Mus. Lud. Ulr. p. 47, no. 49 (1882) (partim).
Acraea 6. Actinote thalia Schatz, Fam. Gatt. Tagf. p. 103, t. 13 (1887).
Actinote thalia Kirby, in Allen's Natur. Libr, Butt. Vol. 1, p. 39 (1894); Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11,
p- 14 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 367, t. 83¢ (1913).
ab. idiographa Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 367 (1913).
32. Actinote cedestes Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 33, no. 7 (1913). Ecuador.
a. Actinote cedestes suspecta Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 369 (1913).
West Ecuador.
b. Actinote cedestes cedestes Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 33, no. 7 (z913).
Actinote cedestes Jordan, ibidem, Vol. 46, p. 33, no. 7 (1913); Jordan, in Wagner, Lep, Cat. Pt. iF p- II (1913).
?) Acraea anteas Dognin (nec Doubleday, 1847), Lép. Loja, Pt. 1. p. 9 (1887) & Pt. 2, p. 34 (1891).
(2) Acraea thalia Weymer (nec Linnzus, 1753), in Stiibel, Reise Stid-Amer. p. 64, no. 39 (18g0).
?) Actinote thalia Godman & Salvin, in Whymper, Andes, Suppl. p, 99, no. 23 (1891).
Actinote cedestes cedestes Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 369, t. 83a (1913).
South-East Ecuador.
16 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
33. Actinote terpsinoé Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 6, p. 78, no. 63 (1862) Peru, Bolivia.
(Acraea).
a. Actinote terpsinoé terpsinoé Felder, ibidem, Vol. 6, p. 78, no. 63 (1862) (Acraea).
Acraea terpsinoé Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 57a (1871).
Actinote terpsinoé subsp. terpsinoé Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 11 (1913).
Aciinote terpsinoé terpsinoé Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 369 (1913).
North Peru.
b. Actinote terpsinoé crassinia Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 345, no. 33 (1874) (Acraea).
Acraea crassinia Hopffer, ibidem, Vol. 35, p. 345, no. 33 (1874); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 719, no. 87 (1877);
Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 40, p. 421, no. 156 (1879); Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885).
Acraea terpsinae Druce (err. typ.), Proc. Zool. Soc. Lond. p. 218, no 2 (1876).
Actinote crassinia subsp. crassinta Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 11 (1913).
Actinole terpsinoé crassinia Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 369, t. 82g (1913).
East Peru, Bolivia.
c. Actinote terpsinoé eupelia Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 33, no. 8 (1913).
Actinote crassinia subsp. eupelia Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 11 (1913).
Acraea terpsinoé eupelia Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 370, t. 824 (1913).
South-East Bolivia.
34. Actinote guatemalena Bates, Ent. Monthly Mag. Vol. 1, p. 58, no. 3r Mexico to Colombia.
(1864) (Acraea).
a. Actinote guatemalena veraecrucis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 370 (1913).
Vera Cruz, Mexico.
b. Actinote guatemalena guatemalena Bates, Ent. Monthly Mag. Vol. 1, p. 58, no. 31 (1864) (Acraea).
Acraea guatemalena Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 56 (1871).
Actinote thalia Butler & Druce (nec Linneus, 1758), Proc. Zool. Soc. Lond. p. 352, no. 244 (1874) (partim).
Actinote guatemalena Godman & Salvin, Biol. Centr. Amer. Rhop. Vol. 1, p. 141, no. 2, t. 16, f. 2 (1881);
ibidem, Vol. 2, p. 667 (1901); Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913) (partim).
Actinole guatemalena guatemalena Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 370, t. 83b (1913).
Guatemala, Costa Rica.
c. Actinote guatemalena latior Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol 5, p. 370 (1913).
Colombia.
35. Actinote melampeplos Godman & Salvin, Biol. Centr.-Amer. Rhop.Vol.1, Costa Rica, Ecuador.
p- 142, no. 3 (1881).
Actinote guatemalena ab. melampeplos Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913).
Actinote melampeplos Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 370 (1913).
36. Actinote lapitha Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82 (1885). Panama.
Actinote lapitha Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11,p. 12 (1913) ; Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 370
t. 83¢ (1913).
37. Actinote equatoria Bates, Ent. Monthly Mag. Vol. 1, p. 59, footnote Venezuela to Bolivia.
(1864) (Acraea).
a. Aotinote equatoria hahneli Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 370 (1913).
f. semtlutea Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 370 (1913).
Mérida, Venezuela; Santa Marta.
b. Actinote equatoria perfulva Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 370 (1913).
f. flavifascia Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 371 (1913).
East Colombia.
c. Actinote equatoria limbata Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 371 (1913).
f. cauca Jordan, ibidem, Vol. DS Pas7i(rors)):
Central and West Colombia, Nicaragua.
FAM. NYMPHALID® 17
d. Actinote equatoria grammica Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 371 (1913).
West Ecuador.
e. Actinote equatoria equatoria Bates, Ent. Monthly Mag. Vol. 1, p. 59, footnote (1864) (Acraea).
Acraea equatoria Kirby, Cat. diurn Lep. p. 137, no. 73 (1871).
Acraea aequatoria Dognin, Lép. Loja, Pt. 1, p. g (1887) & Pt. 2, p. 34 (1891).
(2) Acraea pellena Dognin, ibidem, Vol. 1. p. 9 (1887) & Pt. 2, p. 34 (1891).
(2) Acraea mucia Dognin, ibidem, Vol. 1, p. 9 (1887) & Pt. 2, p. 34 (1891).
Actinote equatoria Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt 11, p. 11 (1913) (partim).
Central Ecuador, Peru.
. Actinote equatoria mucia Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 346, no. 36 (1874) (Acraea).
Acraea mucia Hopffer, ibidem, Vol. 35, p. 346, no. 36 (1874) (Acraea); Druce, Proc. Zool. Soc. Lond p. 218,
no. 5 (1876); Kirby, Cat. diurn. Lep, p. 719, no. 103 (1879); Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 40, p. 424,
no. 159 (1879).
Actinote mucta Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913).
Actinote equatoria mucia Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 371 (1913) (an eadem ut equat.?)
Chanchamayo.
. Actinote equatoria epiphaea Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 371 (1913).
oq
East Peru.
h. Actinote equatoria adriana Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 345, no. 35 (1874) (Acraea).
Acraea adriana Hopfer, ibidem, Vol. 35. p. 345, no. 35 (1874) (Acraea); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 718, no. 77
(1877); Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 40, p. 423, no. 158 (1879).
Actinote adriana Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 10 (1913).
Actinote equatoria adriana Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 372 (1973).
?) Acraea anteas Weeks (nec Doubleday, 1847), Illustr. diurn. Lep. p. 17 (1905).
(2) Acraea ranavalona (!) Weeks (nec Boisduval, 1833), ibidem, p. 31 (1905).
7. Actinote equatoria lodis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 372 (1913).
Bolivia.
38. Actinote pellenea Hiibner, Samml. Exot. Schmett. Vol. 2, t. 18, f. 1-4 Brazil to Venezuela
(1820-1824). and Trinidad.
a. Actinote pellenea subbadia Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 6, p. 372 (1913).
Acraea subhivalina Hahnel (nec Staudinger, 1885). Iris, Vol. 3, p. 306 (1890).
Actinote pellenea subsp. subhyalina Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913).
Venezuela.
. Actinote pellenea trinitatis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 372 (1913).
Acraea pellenea Urich, Journ. Trinidad Field Club, p. 109 (1892).
Acraea (Actinote) anteas Crowfoot, ibidem, p 173 (1893).
Actinote anteas Kaye, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 167, no. 20 (1904).
Actinote alalia Kaye (nec Felder, 1860), ibidem, p. 167, no. 21 (1904).
Trinidad.
c. Actinote pellenea subhyalina Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 82, t. 32 (1885) (Acraea),
Acraea subhyalina Staudinger, ibidem, Vol. 1, p. 82, t. 32 (1885) (Acraea).
Actinote pellenea subsp. subhyalina Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913) (partim).
Actinote pellenea subyalina Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 372 (1913).
f. ferrugata Jordan, ibidem, Vol 5, p. 372 (1913).
o
Amazonas.
d. Actinote pellenea pellenea Hiibner, Samml. Exot. Schmett. Vol. 2, t. 18, f. 1, 4 (1820-1824).
Actinote pellenea Hiibner, ibidem, Vol. 2, t. 18, f. 1, 4 (1820-24).
Acraea pellenea Hop‘ffer, Stett. Ent. Zeit. Vol, 35, p. 345, sub no. 35 (1874); Capronnier, Ann. Soc. Ent. Belg.
Vol. 17, p- 24, no. 100(1874); Jones, Proc. Liter. Philos. Soc. Liverpool, Vol. 36, (separ.) p. 36, no. 15,
t. 4, f. 7 (1883).
Actinote pellenea BOnninghausen, Verh. Naturw. Unterh. Hamburg, Vol. 9, p. 33 (1896).
(?) Acraea fellenea W. Miller, Zool. Jahrb. Syst. Vol. 1, p. 424, t. 15, f. 1 (1886).
Actinote pellenna (!) Mabilde, Borboletas, p. 63,t.3,f 7a, b, ¢ (1896).
Actinote pellenea subsp. pellenea Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913).
Actinote pellenea pellenea Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 372 (1913).
Brazil.
18 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
e. Actinote pellenea crucis Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 33, no. 10 (1913).
Actinote pelleneasubsp. crucis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913).
Actinote pellenea crucis Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 372, t. 83c (1913).
East Bolivia.
f. Actinote pellenea calymna Jordan, The Entomologist Vol. 46, p, 33, no. 11 (1913).
Acraea pellenea Burmeister, Descr. Rép. Argent., Lép. Vol. 5, p. 127, no. 2 (1878) (partim).
Actinote pellenea subsp. calymna Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913).
Actinote pellenea calymna Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 372, t. 83c (1913).
f. clara Jordan, in Seitz, ibidem, Vol. 5, p. 372 (1913).
Paraguay, Argentina.
39. Actinote pyrrha Fabricius, Syst. Ent. p. 464, no. 95 (1775) (Papilio Heliconius). Brazil.
Papilio Heliconius pyrrha Fabricius, ibidem, p. 464, no. 95 (1775); Goeze, Ent. Beytr. (3), Vol. 1 p, 107, no. 3
(1779); Fabricius, Spec. Ins. Vol. 2, p. 33, no. 139 (1781); Fabricius, Mant. Ins. Vol. 2, p. 16, no. 160
(1787); Gmelin, Syst. Nat. (5), Vol. 1, p. 2252. no. 368 (1790); Fabricius, Ent. Syst. Vol. 3, Pt. 1, p. 176,
no. 547 (1793).
Acraea thalia Godart (nec Linnzus, 1758), Enc. Méth. Vol. 9, p. 240, no. 33 (1819) (partim); Lucas, Lép. Exot.
p- 101, t 52 (1835) (partim).
Acraea (sect. Actinote) thalia Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142, no. 38 (1848) (partim).
(2) Acraea euterpe Felder, Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 12, p. 475, no. 36 (1862).
Acraea thalia Prillwitz, Stett. Ent. Zeit. Vol. 26, p. 137 (1865).
Actinote thalia Butler, Cat. diurn. Lep. descr. Fabr. p. 128, no. 1 (1869) (partim).
Acraea thalia Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 135, no. 53 (1871) (partim) ; Capronnier, Ann. Soc. Ent. Belg. Vol. 17,
p- 24, no. 97 (1874); Gosse, The Entomologist Vol. 13, p. 197 (1880); F. Miiller, Stett. Ent. Zeit. Vol. 39,
p. 296 (1878); Burmeister, Descr. Rép. Argent., Lép. Vol. 5, p. 126 (1878) (partim) ; F. Muller, Zool. Anz.
Vol. 6, p. 415 (1883) ; idem, Kosmos, Vol. 13, p. 197, f. (1883).
Acraea (Actinote) thalia Aurivillius, Recens. crit. Lep. Mus. Lud. Ulr. p. 47, no. 49 (1882) (partim).
Acraea thalia Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1, p. 81 (1885).
Acraea anteas Staudinger, ibidem, Vol. 1, p. 81 (partim).
(?) Acraea anteas var. W. Miiller, Zool. Jahrb. Syst. Vol. 1, p. 426 (1886).
Actinote thalia Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 54 (1893); Weymer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 40, p. 321, no. 51 (1895).
Actinote anteas BOnninghausen, Verh. Naturw. Unterh. Hamburg, Vol. 9, p. 33 (1896).
Acraea anteas Seitz, Stett. Ent. Zeit. Vol. 51, p. 91 (1891).
Actinote pyrrha Jordan, in Wagner, Lep. Cat.Pt.11,p 13 (1913); Jordan,in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 373,
t. 836 (1913).
40. Actinote carycina Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 373, t. 83a(1913). Brazil, Paraguay.
4t. Actinote parapheles Jordan, The Entomologist, Vol. 4€, p. 33,no.g (1913). —_ Brazil.
dctinote thalia Mabilde (nec Linnzus, 1758), Borboletas p. 64 (1896); BOnninghausen, Verh. Naturw. Unterh.
Hamburg, Vol. 9, p. 33 (1910).
Actinote parapheles Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5,
p. 373, t. 83a (1913).
f. pallescens Jordan, ibidem, Vol. 5, p. 373, t. 824 (1913).
42. Actinote quadra Schaus, Proc. U.S. Nat. Mus. Vol. 24, p. 392 (1902) (Acraea). Brazil.
Actinote quadra Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 13 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5,
p. 373, t. 82f (1913).
43. Actinote perisa Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 33, no. 12 (1913). Tucuman.
Actinote perisa Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 13 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 373,
t. 82 (1913).
44. Actinotealalia Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol.4,p.105,no0.62(1860)(Acraea). Brazil.
a. ActInote alalia conspicua Jordan, The Entomologist, Vol. 46, p. 32, no. 6 (1913).
Actinote alalia subsp. conspicua Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 10 (1913).
Actinote alalia conspicua Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 374, t. 82¢ (1913).
Rio de Janeiro.
FAM. NYMPHALIDA® 19
5. Actinote alalia alalia Felder, Wien. Ent. Monatschr. Vol. 4, p. 105, no. 62 (1860) (Acraea).
Acraea alalia Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 136, no. 54 (1871).
craea eulalia (!) F. Miiller, Stett. Ent. Zeit. Vol. 39, p. 296 (1878).
a alalia var. Jones, Proc. Liter. Philos. Soc. Liverpool, p. 36 (1882).
tinole alalia Jones, ibidem, p. 8, no. 76 (1883); Mabilde, Borboletas, p. 64 (1896).
Actinote alalia subsp. alalia Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p, 10 (1913).
Actinote alalia alalia Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 374 (1913).
46. Actinote surima Schaus, Proc. U.S. Nat. Mus. Vol. 24.p.392(1902)(Acraea). Brazil, Paraguay.
PIS2y Figzs-1c)o-
Actinote surima Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 13 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 374,
t. 827, g (1913).
47. Actinote mamita Burmeister, Reise La Plata, Vol. 2, p. 168 (1861) (Acraea). Brazil, Paraguay,
Argentina.
a, Actinote mamita mitama Schaus, Proc. U. S. Nat. Mus. Vol. 24, p. 39 (1902) (Acraea mitama),
Actinote mamita Mabilde, Borboletas, p. 64 (1896).
Actinote mamita subsp. mitama Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913).
Actinote mamita mitama Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 374, t. 82 f (1913).
South-East Brazil.
+. Actinote mamita mamita Burmeister, Reise La Plata, Vol. 2, p. 168 (1861) (Acraea),
Acraza mamita Burmeister, Descr. Rep. Argent., Lép. Vol. 5, p. 129, no. 3 (1878); ibidem, Atlas, p. 11, no. r4,
t. 4, £. 7, 8,14 (1879).
Actinole mamita subsp. mamita Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 12 (1913).
Actinote mamita mamita Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 5, p. 374 (1913).
Argentina, Paraguay.
48. Actinote canutia Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p.345,sub no. 35 (1873) Brazil, Paraguay.
(Acraea).
Actinote pellenea Geyer (nec Htibner, 1820-1824), in Htibner, Zutr. Exot Schmett. f. 741, 742 (1832).
Actinote canutia Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 11 (1913); Jordan, in Seitz, Grossschmett. Vol. 3,
p. 374, t. 82g (1913).
49. Species mihi ignota : Actinote carbonaria Hopffer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 35, p. 348, no. 42 (1874)
(Acraea).
Acraea carbonaria Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 719, no. 85 (1877); similar to ozomene, but the forewing without a
yellowish red basal area on the upper side.
2. GENUS ACRAEA FABRICIUS
Description. — The genus Acrvaea was founded by Fabricius. His definition is « Taser zwei,
lang. gefranzt, dreigliedrig; drittes Glied klein, nackt. Fiihler geknopft (Putzfiisse) ».
The types given are Pafilio horta, terpsichore and brassolis. The P. brassolis here referred to is a
synonym of the Pierine butterfly Archonias bellona, Cramer.
Latreille defined the genus as follows : « Bord interne des ailes inférieures n’embrassant presque
pas le dessous de l’'abdomen; palpes inférieurs gréles et presque cylindriques; antennes peu allongées
et terminées brusquement en bouton. »
Doubleday, Hewitson, and Westwood in the Genera of diurnal Lepidoptera divide the
species into six groups or subgenera, viz. Hyalites, Planema, Gnesia, Telchinia, Actinote and Pareba. The
definitions of these sub-genera are quite useless. As an example of them we may take Telchinia and
Hyalites, the characters given being precisely the same except that in the latter the second joint of the
labial palpi is said to be « considerably swollen and but little scaly », whilst in the former the same
structure is described as « considerably swollen and clothed in front with scales ». The distinctive
features of Planema are not correctly diagnosed since A. lycoa and jodutta are included in it.
Mabille, in his article on the genus in Histoive naturelle de Madagascar states that they can
be divided into groups, perhaps genera, by the structure of the male and female genital armatures, but
20 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
his conclusions are based on an inadequate study of these organs. He divides the species into
Solenites, Phanopeltis, Apranopeltis and Acraea, but these divisions do not hold good.
Schatz and Rober recognise five groups but admit that they are but slightly separated. The
characters given are for the most part inconstant.
Careful examination of all the features which have been utilised in the past for the purpose of
subdividing the genus convinces me that they do not in fact provide grounds for such subdivision.
Acraea may be distinguished from Planema by the following features. The palpi are not black
(except in most examples of A. johnston: butler’), the first branch of the forewing subcostal is given off
before the end of the cell, and the discoidal cell of the hindwing is relatively much larger. The pupae
of Acvaea do not, so far as is known, possess the long hooked spines found on those of Planema.
The South American genus Actimote is less distinct from Acraea than is Planema. The distinctive
features of Actinote are black palpi, a rudimentary nervule in hindwing between submedian and first
median (also present in Acraea mirifica), and the heavily marked black nervules and internervular rays
on the underside of the hindwing. The neuration in Actinote is more unstable than in Acraea, the sixth
and seventh nervules being sometimes stalked in both fore and hindwings.
The general characteristics of Acvaea are as follows.
Characters. — Forewings either rounded or elongate, the inner margin straight or very
slightly concave. The palpi ochreous, very rarely blackish, the short terminal joint usually set with
black hairs. No lateral greyish white line. The fore-legs rudimentary, their tarsi in the female with
much reduced joints, and spined beneath; in the male hairy and brushlike with rudimentary joints.
The second and third pairs of legs are of normal size and their tarsi terminate in the female in two
equal and similar claws lobed at the base. In the male these claws are also equal and similar in a few
species (PI. |, Fig. 1 2b) but in the majority they are unequal (Pl. |, Fig. 12a), one being long and
regularly curved, the other short and bent down almost at right angles to the upper or anterior edge of
the basal lobe (in A. sevvona with normally equal claws, unequal claws are occasionally found). In the
forewing the discoidal cell is of medium length. The upper discocellular is very short, and the subcostal
nervure is five branched, the first branch being given off before the end of the cell. In the hindw ing the
discoidal cell is usually longer than in Planema and reaches to about the middle of the wing. The sixth
and seventh nervules usually arise from independent points, but in a few species from a common stalk. In
one species, A. buvni, they vary in this respect in different individuals, aud even in the two wings of the
same individual. In others such as A. ttuvina the stalked condition appears to be constant. In some species
nervules 3 and 4, arise from a point at the end of cell. The scales are normally of uniform size and
nearly round. In a few species large special scales are found on the median nervure on the underside
of the forewing. The antennz are short and rather abruptly clubbed. The female usually possesses a
chitinous plate on the seventh sternite surrounding the external opening of the bursa copulatrix. The
form of this plate is specifically constant in most species. Those females which possess such a plate
have upon it after pairing a hard wax-like structure, often containing scales and hairs from the male.
The larve have two dorsal, two lateral and two sublateral rows of branched spines, and the pupe are
white or whitish with black spots, often in the form of rings enclosing yellow or pink centres. Part of
the wing neuration, and the positions of other appendages are more or less outlined in black on the
pupal skin. In many cases the pupa bears short blunt spines or processes, but so far as is known never
has long hooked spines as in Planema. The genus is almost confined to the Athiopian region. In the
Oriental region there occur four, or perhaps five species according to whether we regard A. meyeri and
A. moluccana as one species or two. (Pl. |, Figs. 10a, | Ob.)
The larvee are gregarious and the perfect insects are slow of flight and usually indifferent to pursuit.
Most are possessed of great vitality resisting both mechanical injury and the effect of poisonous fumes.
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The wing patterns are in many species extremely variable, the variation being in some cases
seasonal. Several species are polymorphic and the different forms may be subspecific, i. e. peculiar
to certain localities, or they may occur at the same time and place. The practice, especially noticeable
amongst certain naturalists writing in German periodicals of giving names to trivial variations of no
geographical or other importance is extremely regrettable, and the cause of much unnecessary labour
to synonymists. Some species produce forms the patterns of which resemble those of species belonging
to other genera. Many extremely dissimilar forms are now known to be specifically identical, whilst
some undoubtedly distinct species resemble one another very closely.
Acraea Fabricius, Illigers Mag. Ins. Vol. 6, p. 284 (1807); Latreille, Enc. Méth. Vol. 9, p. 10, 172
(181g); Doubleday, Hewitson & Westwood, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 137 (1848); Trimen,
Rhop. Afr. Austr. p. 92 (1862); Herrich-Scheeffer, Prodr. Syst. Lep. Vol. 1, p. 9 (1864); Schatz
& Réber, Exot. Schmett. Vol. 2, p. ror (1887); Mabille, in Grandidier, Hist. Nat. Madag. Lep.
Vol. 1, p. 81-88 (1887); Trimen, South Afr. Butt. Vol. 1, p. 131 (1887).
Hyalites Doubleday, Gen. diurn. Lep. p. 140 (1848); Schatz & Réber, Exot. Schmett. Vol. 2, p. 102, °
pl. 13 (1887).
Gnesia Doubleday, ibidem, p. 141 (1848); Schatz & Rober, ibidem, p. 102, pl. 13 (1887).
Telchinia Hiibner, Verz. Schmett. p. 27 (1816-1827); Doubleday, Gen. diurn. Lep. p. 141 (1848);
Schatz & RGber, Exot. Schmett. Vol. 2, p. 103, pl. 13 (1887).
Pareba Doubleday, Gen. diurn. Lep. p. 142 (1848); Schatz & Réber, Exot. Schmett. Vol 2, p. 103,
pl. 13 (1887).
Solenites Mabille, in Grandidier, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 82 (1887).
Phanopeltis Mabille, ibidem, p. 84 (1887).
Aphanopeltis Mabille, ibidem, p 85 (1887).
= Acraea Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 81 (1898); Eltringham (Monograph), Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 1-374, pl. 1-16 (1912).
Miyana Fruhstorfer. in Seitz, Grossschmett. Vol. 9, p. 743 (1914).
[Marked * are recently described forms which I have not examined. lets 13]
1. Acraea zonata Hewitson.
Acraea zonata zonata Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 14, p. 154 (1877); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 83
(1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 42, pl. 8, f. 11 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep.
p- 288, pl. 53a (1913)
= makupa Grose-Smith, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p 126 (1889); Grose-Smith & Kirby, Rhop.
Exot. Vol. 9, p 3, pl. 1, f. 6 (1889).
British East Africa, German East Africa.
2. Acraea rabbaiae \Vard.
a. Acraea rabbaiae mombasae Grose-Smith, Ann. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 127(1889); Grose-Smith & Kirby,
Rhop. Exot. Vol. 21, p. 14, pl. 4, f. 9. 10 (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 83 (1898); Eltringham,
Trans Ent. Soc. Lond. p, 43 (1912).
British East Africa, German East Africa.
6. Acraea rabbaiae rabbaiae Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 10, p. 152 (1873); Oberthur, Etud. d’Ent. Vol. 3,
p- 25, pl. 2, f. 1 (1878); Trimen,S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 133 (1887); Monteiro (metam), Delagoa Bay, p. 219
(1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 83 (1898); Eltringham, Trans. Ent Soc. Lond. p. 43, pl. 8, f. 10(g),
(1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 288, pl. 53a (1913).
German East Africa, Portugese East Africa.
3. Acraea satis Ward.
Acraea satis Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 8, p. 35(1871); Ward. Afr. Lep. p.6, pl. 6, f. 1 (1875); Mabille,
Nat. Hist. Madag. Lép. Vol. 1, p. 115, pl. 10, f. 10, 11 (1885-1887); Aurivillius, Ikhop. Aethiop. p go,
22 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
(1898); Aurivillius, Voeltzkow Exp. p. 315 (1909); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 45, pl. 14,
f. 14, 14a, 14) 14¢ (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 284, pl. 54a (1913). *
= corona Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 83, pl. 33 (1885).
British East Africa, German East Africa, Rhodesia, Zululand.
4. Acraea pentapolis Ward.
a. Acraea pentapolis pentapolis Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 8, p. 60 (1871); Ward, Afr. Lepid. p. 7, pl. 6,
f. 2 (1873); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 111 (1898) ; Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 186 (1903); Neave,
Novit. Zool. Vol. 12, p. 346 (1904); Aurivillius, Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, p. 3 (527) (1910); Eltring-
ham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 47, pl. 14, f. 2 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 257,
pl. 56e (1913).
= thelestis Oberthur, Etud. d’Ent. Vol. 17, p. 17, pl. 3, f. 33 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 111 (1898);
in Seitz, Macr. Lep. p. 257, pl. 367 (1913).
Sierra Leone to Uganda.
b. Acraea pentapolis epidica Oberthur.
= Acraea epidica Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 18, pl. 3, f. 27 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 111 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 46 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 257,
pl. 56f (1913).
German East Africa.
5. Acraea vesperalis Grose-Smith.
a. Acraea vesperalis catori Bethune-Baker, Ann. Mag. Nat. Hist. p. 223 (1904); Dudgeon (vesperalis\, Proc.
Ent. Soc. Lond. p. 54 (1909); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 49 (1912).
Sierra Leone.
b. Acraea vesperalis vesperalis Grose-Smith, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 466 (1890); Grose-Smith & Kirby,
Rhop. Exot. Vol. 19, p. 7, pl. 3, f. 1, 2 (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 112 (1898); Griinberg, Sitzb.
Ges. Nat. Freunde, Berlin, p. 150 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 48, pl. 14, f. 3-(g) (1912).
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 257, pl. 56 (f) (1913).
Sierra Leone, Congo, Uganda.
*>!. Acraea vesperalis vesperalis forma punctuta Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12, p. ror (1913).
Cameroon
6. Acraea igati Boisduval.
Acraea igati Boisduval, Faune Madag. p. 29, pl.4, f. 3, pl. 5, f. 3 (1833); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1,
p- 83, pl. 33 (1885); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. p. 82, 89, pl. 10, f. 1, 2 (1885-1887) ; Oberthur, Etud.
Ent. Vol. 13, p. 13, pl. 4, f. 22 (1890); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 85 (1898); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 49, pl. 7, f. 12 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 288, pl. 53a (1013); Oberthur,
Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 153, pl. 331, figs. 2782-2786 (1916.)
Madagascar.
7. Acraea damii Vollenhoven.
a. Acraea damii cuva Grose-Smith (A. cuva), Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 126 (1889); Grose-Smith &
Kirby, Rhop. Exot. p. 2, pl. 1, f. 5 (1889); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 86 (1898); Grose-Smith & Kirby,
Rhop. Exot. Vol. 3, p. 24, pl. 7, f. 4 (1901); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 50 (1912). Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 288, pl. 57a (1913).
British East Africa, German East Africa.
a'. Acraea damii cuva forma nidama Suffert, Iris, p. 19 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 5o
(1912).
British East Africa, German East Africa.
b. Acraea damii damii Vollenhoven, Pollen & Van Dam, Faune Madag. Vol. 5, Ins. p. 12, pl. 2, f. 4 (1869);
Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 83, 88, pl, 10, f. 3, 4 (1885-1887); Oberthur, Etud. Ent. Vol. 13,
p. 12, pl. 3, f. 11-16 (1890) ; Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 85 (1898): Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 5o, pl. 7, f. 11a, 116, 11¢, {g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 288, pl. 53d (1913); Oberthur,
Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p 155, pl. 332, figs, 2787-2791 (1916).
= percussa, Keferstein, Jahrb. Akad. Erfurt, (2 , Vol. 6, p.13, pl. 1, f. 1, 2 (1870).
= masonala, Ward, Ent. Monthly Mag. Vol 9. p. 3 (1872); Afr. Lep, p. 10, pl. 7, f. 5 (1874).
Mayotta, Comoro, Madagascar.
FAM. NYMPHALIDA®
23
S. Acraea kraka Aurivillius.
p. 287
Acraea kraka Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p, 272, pl. 6, f. 3(1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 86
(1898) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 52, pl. 7, f. 15 (g) (1912) ; Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep.
287, pl. 530 (1913).
Cameroon, Fernando Po.
9g. Acraea eugenia Karsch.
Lep. p. 287
a, Acraea eugenia eugenia Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 196 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p. 86 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond, p. 53, pl. 4, f. 13, 2 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr.
- 287, pl. 53b, 60a (1913).
Togoland, Angola.
a' Acraea eugenia eugenia forma ochreata Griinberg, Sitz. Ges. Nat. Freunde, Berlin, p. 470 (1910).
10. Acraea cerasa Hewitson.
Acraea cerasa Hewitson, Exot. Butt. pl. 2, f
ro (1861); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 139 (1887);
Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 21, p. 11, pl. 4, f. 1 (non f. 2) (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 86 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 54, pl. 7, f. 14, pl. 16, f. 1 (g¢
Seitz. Macr. Lep. p. 287 pl. 534 (1913).
g) (1912); Aurivillius, in
Natal, German East Africa, British East Africa.
tr. Acraea cerita Sharpe.
Toro.
(
2
Acraea cerita Sharpe, Ann. Mag. Nat. Hist. (7), Vol. 18, p. 75 (1906) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 55, pl. 4, f. 9, S (1912); Aurivillius in Seitz, Macr. Lep. p.
7, pl. 68¢ (1913).
12. Acraea unimaculata Grose-Smith.
2
aN)
Acraea unimaculata Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 5, p. 350 (1898); Aurivillius (iumélis), Rhop. Aethiop.
3 (1901); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 56, pl. 6, f. 16 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 287, pl. 60a (1913).
British East Africa.
p. 86 (1898); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 6, pl. 6, f. 1,
13. Acraea iturina Grose-Smith.
a. Acraea iturina iturina Grose-Smith, Proc. Zool. Soc. p. 465 (1890); Grose Smith & Kirby, Rhop. Exot.
Freunde, Berlin, p. 148 (1910
); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 57, pl. 7, f. 13 (g) (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 287 (1913). ;
Vol. 21, p. 12, pl. 4, f. 3, 4 (1912); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 86 (1898); Griinberg, Sitz -Ber. Ges. Nat.
Cameroon, Belgian Congo, Uganda.
b. Acraea iturina kakana subspec. Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 150 (1911); Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 57. pl. 4, f. 14, S (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 287, pl. 60¢ (1913).
Abyssinia.
14. Acraea humilis Sharpe, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 19, p. 582 (1897); Grose-Smith & Kirby,
Rhop. Exot. Vol. 7, p. 23, pl. 7, f. 3 (non f. 1 & 2) (1901); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep.
p- 256 (1913).
= oerestia forma humilis, Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 305 (1912) (part).
Uganda.
15. Acraea quirina Fabricius.
a. Acraea quirina qulrina Fabricius (Pap.) Spec. Ins. Vol. 2, p. 36 (t781); Godart, Enc, Méthod. Vol. 9, p. 231
(1819):
Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 193 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 86 (1898);
Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 923 (1900); Aurivillius, Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, p. 19 (512) (1910);
Eltringham, Trans, Ent. Soc. Lond. pl. 7, f. 18, pl. 16, f. 6 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep.
p. 287, pl. 536 (1913).
= dice, Drury (Paf.) Ill. Exot. Ins. Vol. 3, p. 23, pl. 18, f. 3, 4 (1782); Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 5, p. 24,
pl. 83, f. 3, 4 (1792); Trimen, Rhop. Afr. austral. p. 95 (1862).
Senegal, Sierra Leone, Togoland, Nigeria, Gaboon, Congo, British East Africa, German East Africa.
24 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
6. Acraea quirina rosa Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 59 (1912).
British East Africa.
16. Acraea hova Boisduval. — Pl. |, Fig. 2a.
Acraea hova Boisduval, Faune Madag. p. 29, pl. 4, f. 1, 2 (1833); Blanchard. Hist Nat. Ins. Vol. 3, p. 438,
pl. 11, f. 1 (1840); Lucas, in Chenu, Enc. Hist. Nat. p. 3, f. 6, pl. 27, f..3 (1852); Guenée, in Vinson,
Voy. Madag. Annexe, p. 35 (1864); Ward, Afr. Lep. p. 10, pl. 7, f. 6 (1874); Mabille, Hist. Nat Madag.
Lép. Vol. 1, p. 94, pl.9, f. 1-3, pl. 9a, f. 6 (1885-1887); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 87 (1898); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 60, pl. 7, f. 17 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p, 286, pl. 53¢ (1913).
Madagascar,
17. Acraea rogersi Hewitson.
a, Acraea rogersi rogersi Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 10, p. 57 (1873); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p. r10 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 61, pl. 14, f. 17 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr
Lep. p. 258 (1913).
= ehmckei Dewitz, Ent. Nachr. Vol. 15, p. 103, pl. 1, f. 6-8 (1889).
a', Acraea rogersi rogersi forma salambo Grose-Smith, Ann. Mag. Nat. Hist. (5), Vol. 19, p. 62 (1887);
Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 10, p.5, pl. 2, f. 3-4 (1889); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38,
p- 194 (1893); Aurivillius, Rhop, Aethiop. p. 110 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 61 (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 259, pl. 56d (1913).
Sierra Leone, Gold Coast, Cameroon, Congo, Angola.
6. Acraea rogersi lamborni Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 62 (1912). — Pl. | 9 Fig. 5S, Cx:
Nigeria (Lagos).
18. Acraea ranavalona Boisduval.
a. Acraea ranavalona ranavalona Boisduval, Faune Madag. p. 30, pl. 6, f. 3, 4, 5 (1833); Geyer, Hubner,
Zutr, Exot. Schmett. Vol. 5, p. 31, f. 925, 926 (1837); Blanchard, Hist. Nat. Ins. Vol. 3, p. 438 (1840);
Staudinzer, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 83 (1885); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol.1, p. 92, pl.9, f. 4,
5, pl. ga, f. 5 (var.) (1885-1887) ; Oberthur, Etud. Ent. Vol. 13, p. 11, pl. 5, f. 25-30 (1890); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p. 87, 88 (1898); Voeltzkow, Exped. p. 315 (1909); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 64, pl. 7, f. 7, pl. 16, f. 2(g) (1912); Aurivillius, in Seitx, Macr. Lep. p. 286, pl. 53¢, d (1913).
= manandaza (part), Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 9, p. 147 (1872).
Madagascar.
a\. Acraea ranavalona ranavalona forma maransetra, Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 9, p. 2 (1872);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 64 (1912).
Madagascar.
a. Acraea ranavalona ranavalona, 2, forma manandaza Ward, Afr. Lep. p. 9, pl. 7, f. 1, 2 (1874) ; Ober-
thur (vanavalona), Etud. Ent. Vol. 13, p. 11, pl. 5, f. 23-24 (prox.) (1890); Eltringham, Trans, Ent. Soc.
Lond. p. 64 (1912) (nec Mabitle, Hist. Nat. Madag. Lép. pl. ga, f. 5 (1885-1887); Aurivillius, in Seitz,
Macr. Le}. p. 286, pl. 53d (1913).
Madagascar, Comoro.
19, Acraea machequena Grose-Smith.
Acraea machequena Grose-Smith, Ann. Mag. Nat. Hist. (5), Vol. 9, p. 62 (1887); Grose-Smith & Kirby,
Rhop. Exot. Vol. 9, p. 2, pl. 1, f. 3, 4 (1889); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 3, p. 377 (1889); Monteiro,
Delagoa Bay. Frontispiece, f. 9 (1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 88 (1898); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 66, pl. 7, f. 8 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 286, pl. 53d (1913).
Rhodesia, Nyassaland, Portugese East Africa.
20. Acraea Jia Mabille.
Acraea lia Mabille, Bull. Soc. Philom. Paris (7), Vol. 3, p. 132 (1879); Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p.97,
pl oa, f. 8, 8a (1885-1887) ; Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol, 29, p. 15, pl. 5, f. 1-3 (1894); Auri-
villius, Rhop. Aethiop. p. 88 (1898) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 67, pl. 7,f. 10(g) (1912); Auri-
villius, in Seitz, Macr. Lep. p, 285, pl. 53e (1913).
Madagascar.
FAM. NYMPHALIDA® 25
21. Acraea obeira Hewitson.
a. Acraea obeira burni Butler (4. burnt), Ann, Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 18, p. 467 (1896); Butler, Proc. Zool.
Soc. Lond. p. S41, pl. 50, f. 3 (1898); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 88 (1898); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 68 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 286 (1913).
Natal.
6. Acraea obeira obeira Hewitson, Proc. Zool. Soc. Lond. p, 65 (1863); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1,
p 95, pl. ga, f. 7, pl. ro, f. 5, 6 (1885-1887); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 88 (1898); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 68, pl. 7. f. 9, pl. 16, f. 21 (g) (1912): Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 285, pl. 53d
(1913).
= piva Guenée, in Vinson Voy. Madag Annexe, p. 34 (1864).
= andromba Grose-Smith, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 7, p. 124 (1891); Grose-Smith & Kirby. Rhop.
Exot. Vol. 21, p. 13, pl. 4, f.6 8 (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop, p. 88 (1898); Oberthur, Etud. de Lép.
Comp. Vol. 16, p. 172, pl. 333, figs. 2797-2798 (1916).
Madagascar.
22. Acraea mahela Boisduval.
Acraea mahela Boisduval, Faune Madag. p. 31, pl. 6, f. 1 (1833); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1,
p- 90, pl. 11, f. 13 (1835-1887); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 87 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 71, pl. 7, f. 6, pl. 16, f. 3(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 286, pl. 53¢ (1913).
= madhela Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 83 (1885).
Madagascar, Juan de Nova.
23. Acraea neobule Doubleday. — PI. 1, Fig. I.
a. Acraea neobule seis Feisthamel (4 se/s) Ann. Soc. Ent. France, p. 247 (1850); Aurivillius (xeobule var seis),
Rhop. Aethiop. p. 89 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 73 (1912).
= calyce Godman & Salvin, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 221, pl. 17, f. 1, 2 (1884).
Senegal, S. Leone, Liberia, Ashanti, Togo, Dahomey, Nigeria, French Sudan.
6. Acraea neobule neobule Doubleday, Hewitson & Westwood, Gen. diurn. Lep. pl. 19, f. 3 (1848); Guérin, in
Lefévre, Voy. Abyssinie, Ent. Vol. 6, p. 378 (1849); Reiche, in Ferret & Galinier, ibidem, p. 466, pl. 33,
f. 3, 4 (1849); Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 345 (1870); S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 137 (1887); Butler,
Proc. Zool. Soc. Lond. p. 66 (1888) ; Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 89 (1898); Butler, Proc. Zool. Soc.
Lond. p. 192, 401 (1898); Dixey, ibidem, p. 11 (1900) ; Butler, ibidem, p. 923 (1900); Neave, Novit. Zool.
Vol. 11. p. 346 (1904) ; Aurivillius, Voeltzkow Exped., Lep. p. 315 (1909); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond.
p. 11 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 72, pl. 7, f. 3, pl. 15, f. 18 (g) (1912); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep. p. 285, pl. 53f (1913) (1).
= matuapa Grose-Smith. Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 127 (1889); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot.
Vol. 10, p. 6, pl 2, f. 5, 6 (1889).
? = mhondana Vuillot, Ann. Soc. Ent. France, Vol. 60, Bull. p. 115 (1891).
Congo to East Coast. Abyssinia to Cape Colony, Comoro Island
b'. Aoraea neobule neobule forma sokotrana Rebel, Denkschr. Akad. Wiss. Wien (71), Vol. 2, p. 28 (1907);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 72 (1912).
= neobule Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 177, pl. 18, f. 5 (1881); Dixey, ibidem, p. 374 (1898); Grant,
Nat. Hist. Sokotra, p. 2304/1903); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 11 (1910) (part.)
Sokotra, North East Rhodesia.
*bz, Acrae aneobule neobule forma braesioides Wichgraf, Deutsche Ent. Zeitschr. p. 347 (1914).
Mashonaland.
#13, Acraea neobule neobule forma guttata Wichgraf, Deutsche Ent. Zeitschr. p. 347 (1914).
Mikindani.
c. Acraea neobule arabica Rebel (A. arabica) Denkschr. Akad. Wiss. Wien (71), Vol. 2, p. 28, p. 20, f. 1, 2,
p. 30, f. 3, 4,5(g), pl. 1, f. 1, 2, S (1907); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 73 (1912).
South Arabia.
(1) This figure is very poor and gives a wrong idea of the appearance of the insect. It is most unfortunate that in
this otherwise useful work the figures of the species of Acraea are nearly all extremely rough, and the colouring crude and
inaccurate. HE:
26 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
24. Acraea zambesina Aurivillius.
Acraea zambesina Aurivilllius, Arkiv f. Zool. no. 5, Vol. 5, p. 123 (1908); Mendes, Brotéria, Ser. Zoo).
(9g), Vol. 3, p. 160, pl. 7, f. t (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 75 (1912).
Portugese East Africa.
25. Acraea horta Linnzus.
a. Acraea horta horta Linneus (Pap.) Mus. Lud. Ulr. p. 234 (1764); Linneeus, Syst. Nat. (ed. 12), p. 755 (1767);
Fabricius, Syst. Nat. p. 459 (1775) ; Sulzer, Ges. Ins_p. 143, pl. 15, f. 1 (1776); Cramer, Pap. Exot. Vol 4,
p. 18, pl. 298, f. F. G. (1780); Drury, Ill. Exot. Ins. Vol. 3, p. 37, pl. 28, f. 1, 2 (1782); Wulfen. Ins. Cap.
p- 31 (1786); Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 5, p. 22, pl. 83, f. 1, 2 (1792); Fabricius (A.) in Illigers Mag.
Ins. Vol 6, p. 284 (1807); Godart, Enc. Méth. Lép. Vol. 9, p. 231 (1819); Doubleday, Gen. diurn, Lep-
p. 140 (1848); Trimen, Rhop. Afr. austral. p. 93 (1862); S. Afr. Butt. (metam.) Vol. 1, p. 134-136 (1887);
Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 82, pl. 33 (1885); Brunner von Wattenwyl], Farben d. Ins. p. 5, pl. 4,
f. 43 (1897); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 89 (18a8:; Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 192 (1908); Mar-
shall, Trans, Ent. Soc. Lond. p. 337 (1902); Eltringham, ibidem, p. 77, pl. 7, f. 1, pl. 15, f. 16 (g) (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 285, pl. 53e, (1913).
Transvaal, Zululand, Natal, Cape Colony.
al. Acraea horta forma conjuncta Blachier, Bull. Soc. Lép. Genéve, p. 176, pl. 15, f. 4 (1912).
Locality ?
26. Acraea admatha Hewitson.
a. Acraea admatha admatha Hewitson, Exot. Butt. pl. 3, f. 16, 17 (1865); Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 171 (1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 88 (1898); Gordon, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 330 (1902) ;
Eltringham, ibidem, p. 78, pl. 7, f. 5 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 285, pl. 53e (1913).
Sierra Leone, Ashanti, Gold Coast, Old Calabar, Nigeria, Cameroon, Gaboon, Congo, British East
Africa, Natal, Zululand.
a. Acraea admatha admatha forma leucographa Ribbe (A. leucographa), Iris, Vol. 2, p. 181, pl. 4, f. 1 (1889);
Snellen, Tijdschr. v. Ent. Vol. 38, p. 13 (1895); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 88 (1898); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 79 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 285, pl. 53¢ (1913). — Pl. I,
Frikto Go
Sierra Leone, Cameroon, Nyam Nyam, Congo, Uganda. Abyssinia, British East Africa, German East
Africa,
*q2. Acraea admatha admatha forma bodpis Wichgraf, Deutsch Ent Zeitschr. p 346 (1914).
Zululand.
27 Acraea insignis Distant.
a, Acraea insignis insignis Distant, Proc. Zool Soc. Lond. p. 184, pl. 16, f. 6 (1880); Godman, ibidem, p. 538
(1885); Butler, ibidem, p. 66 (1888); Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol. 6, p. 457 (1891); Auri-
villius, Rhop. Aethiop. p. 89 (1898); Sjostedt’s Exp. Kilimandj. p. 3 (1910); Griinberg, Sitz. Ges. Nat.
Freunde, Berlin, p. 148 (1910); Deutsch Zent. Afr. Exped. (3), Vol. 17, p. 514 (1911); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 81, pl. 7, f. 2, pl. 15, f. 17, pl. 16,f 20(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 284,
pl. 53e (1913).
= balbina, Oberthur, Etud. Ent. Vol. 12, p. 6, pl. 3, f. 8 (1888); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 923 (1900).
= buxtoni Hewitson (nec Butler) Ent. Monthly Mag. Vol. 14, p. 155 (1877).
Uganda, British East Africa, Nyassaland, German East Africa.
a!. Acraea insignis insignis forma siginna Suffert, Iris, p. 19 (1904); Aurivillius, Sjéstedt’s Exped. Kilimandj.
p. 3 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 81 (1912).
British East Africa, German East Africa.
28. Acraea camaena Drury.
Acraea camaena Drury (Pap ) Ill. Exot. Ins. Vol. 2, p. 12, pl. 7, f. 2 (1773); Fabricius, Syst. Ent. p. 464
(1775); Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 5, p. 9, pl. 81, f. 3 (1792); Godart (A.) Enc. Méth. Vol, 9, 234 (1819);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 89 (1898); Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 185 (1903); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 82 pl. 7, f. 4 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 285, pl. 53 f (1913). -
— murcia Fabricius (Pap.) Spec. Ins. Vol. 2, p. 33 (1781).
Sierra Leone, Gold Coast, Liberia, Ashanti, Nigeria, Fernando Po.
FAM. NYMPHALID/® 27
29. Acraea zetes Linnzus.
a. Acraea zetes zetes Linnzus (Pap.) Syst. Nat. (10), p. 487 (1758); Linnzus, Mus. Lud. Ulr. p. 270 (1764) ;
Clerck, Icones Ins. Vol. 2, p. 43, f. 1 (1764); Karsch (A.) Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 195, 198 (1893) ;
Aurivillius (metam) Ent. Tidschr. Vol. 14, p. 275, pl. 4, f. 4, 46 (1893); Rhop. Aethiop. p. 90 (1898); Lathy,
Trans. Ent. Soc. Lond, p. 185 (1903); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 66 (1910); Griinberg, Sitz. Ges.
Nat. Freunde, Berlin, p. 148 (1910); Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 514 (1911); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. (metam), p. 83, pl. 6, f. 5 (larva) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 250 (1913).
a’. Acraea zetes zetes forma menippe Drury (P. menippe) Ill. Exot. Ins. Vol. 3, pl. 13, f. 3, 4 (1782) ; Stoll,
Cramer Suppl. p. 131, pl. 28, f. 1, 1@(1790); Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 5, p. 11, pl. 81, f. 4,5 (1792);
Butler (egina) Proc. Zool. Soc. Lond. p. 46 (1902); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 83 (1912); Auri-
villius, in Seitz, Macr. Lep. p. 280, pl. 54 6 (1913).
== mycenaea Hiibner, Verz. bek. Schmett. p. 27 (1816).
= zethea Godart, Enc. Meth Vol. 9, p. 236 (1819).
= zethes Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 83 (1885).
Sierra Leone, Ashanti, Togo, Nigeria, Cameroon, Gaboon, Congo, Uganda, Barotse.
a, Acraea zetes zetes forma jalema Godart (A. jalema), Enc. Méth. Vol. 9, p. 234 (1819); Aurivillius, Ann.
Mus. Stor. Nat. Genova, p. 16 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond p. 84 (1912).
Sao Thome, Nigeria, Gaboon, Uganda, Rhodesia.
b. Acraea zetes acara Hewitson (A. acava) Exot. Butt. pl. 3, f. 19, 20 (1865); Trimen (zetes) Rhop. Afr. Austral.
p. 99 (1862); Trimen, Trans. Linn. Soc. Lond. p. 517, pl. 42, f, 8,9 (1869); S. Afr. Butt. (metam), Vol. 1,
p- 160, pl. 1, f. 1, 1@(1887); Monteiro, Delagoa Bay, p. 201 (1892) ; Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 91 (1898);
Marshall, Trans. Ent. Soc. Lond. p.504 (1902); Rogers, ibidem, p.525(1908); Aurivillius, Sjosted’s Exped.
‘ Kilimandj. p. 3 (1g10); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 66, pl. 6, f. 6 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 85, pl. 8, f. 2 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 280, pl. 54 0, ¢ (1913).
White Nile, Uganda, British East Africa, German East Africa, Rhodesia, Nyassaland, Transvaal,
Delagoa Bay, Natal.
+} Acraea zetes acara forma mhondana Suffert, Iris, p, 20 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 84
(1912) (loc. as acara).
b*. Acraea zetes acara forma caffra Felder, Reise Novara, Lep. p. 369, pl. 46, f. 10, 11 (1865); Eltringham
(acara) Afr. Mim. Butt. pl. 6, f. 3 (1910) ; Trans. Ent. Soc. Lond. p. 84 (1912).
= tescea Suffert, Iris, p. 20 (1904).
Barotse, Transvaal, Natal.
c. Acraea zetes sidamona Rothschild & Jordan, Novit. Zool. Vol. 12, p. 179 (1905); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 84 (1912).
Abyssinia.
d. Acraea zetes barberi Trimen (A. larberi) Trans. Ent. Soc. Lond. p. 433 (1881); S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 162,
pl. 3,f 1, 1@ (1887); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 84 (1912).
Transvaal, Griqualand,
ad. Acraea zetes barberi aberr. trimeni Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 91 (1898,; Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 84 (1912).
= barberi (3rd example), Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 163 (1887).
Transvaal,
30. Acraea chilo Godman.
a, Acraea chilo chilo Godman, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 184, pl. 19, f. 4, 5 (1880); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
Pp. 96 (1898); Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond, p. 369 (1898); Butler, ibidem, p. gor (1898); Rothschild &
Jordan, Novit. Zool. 12, p. 179 (1905); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond, p. 80, pl. 7, f. 4 (g) (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 252, pl. 54¢ (as barbert) (1913).
= rosina Rogenhofer, Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 41, p. 565 (1891); Rogenhofer, in Baumann, Usambara,
P- 326 (1891).
= zetes, var. acara Pagenstecher, Jahrb. Nass. Ver. Nat. Wiesbaden, p. 133 (1902) (part.).
= wissmanni Weymer, Iris, p. 223 (1903).
a, Acraea chilo 9 forma erystallina Grose-Smith (A. crystallina), Ann, Mag. Nat. Hist. (6) 5, p. 167 (1890);
Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 10, p. 7, pl. 3, f. 3, 4 (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 89
(1898); Neave, Ent. Monthly Mag. p. 171 (1909); Aurivillius, Sjostedt’s Exped. Kilimandj. p. 3 (1910);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 89 (1912).
28 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
a. Aeraea chilo 9 forma hoeneli, Holland (4. /oenel’), Proc. U.S. Nat. Mus. Vol. 18, p. 746 (1896) ; Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 89 (1912).
Abyssinia, Somaliland, British East Africa, German East Africa.
31. Acraea oseari Rothschild.
Acraea oscari Rothschild, Novit. Zool. Vol. 9, p. 595 (1902); Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 151 (1911) ;
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 91, pl. 3. f. 6, g, pl. 8, f. 5 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 252,
pl. 60d (1913).
Abyssinia.
32. Acraea hypoleuca Trimen.
Acraea hypoleuca Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 2, pl. 1, f. 1 (1898); Aurivillius, Rhop Aethiop. p. 96
(1898) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 93, pl. 8, f. 3 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep.
P 277 (1913).
? German South West Africa.
33. Acraea anemosa Hewitson.
a. Acraea anemosa anemosa Hewitson, Exot. Butt. pl. 3, f, 14, 15 (1865); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 157
(1887); Rogenhofer, Verg. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 42, p. 574, f. 2 (g) (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 91 (1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p.54, 192, 401 (1898); Marshall, Trans. Ent Soc. Lond. p. 413
(1902); Dixey, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 3 (1906); Longstaff, ibidem, p. 12 (1906); Rogers, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 525 (1908); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond, p. 12 (1910); Fountaine (metam.), Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 60, pl, 10, f. 16a, 16b (1911); Eltringham, ibidem, p. 95, pl. 8, f. 6, pl. 16, f. 18 (g) (1912).
British East Africa, German East Africa, Rhodesia, Damaraland, Victoria Falls, Portugese East
Africa, Transvaal.
al. Acraea anemosa anemosa forma areticincta Butler (A. arctic:ncta), Ann. Mag. Nat. Hist (5), Vol. 12,
p. 103 (1883); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 658 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 91 (1898); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 94 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 281, pl. 54¢ (1913).
= anemosa Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 53, pl. 33 (1885). (Not confined to any locality).
a, Acraea anemosa anemosa forma interrupta Thurau, Berl Ent. Zeitschr. p. 301 (1903); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 94 (1912).
Uganda.
a3, Acraea anemosa anemosa forma mosana Suffert, Iris, p. 20 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc, Lond.
P. 94 (1912).
(No locality).
at. Acraea anemosa anemosa forma dubiosa Suffert, Iris, p. 20 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
P. 94 (1912).
British East Africa, German East Africa.
«a. Acraea anemosa anemosa forma ufipana Strand, Mitt. Zool. Mus. Berlin, p. 279 (1911); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 94 (1912).
German East Africa, Rhodesia.
a’, Acraea anemosa anemosa forma urungensis Strand, Mitt. Zool. Mus. Berlin, p. 279 (1911); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 94 (1912).
German East Africa.
a’, Acraea anemosa anemosa forma discoguttata Strand, Arch. f. Naturg. (75), Vol. 1, p. 376 (1909).
34. Acraea welwitschii Rogenhofer.
a. Acraea welwitschii welwitschii Rogenhofer, Verb. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 42, p. 573-574, f. 1(g)(1892);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 91, f. 10 (?) (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 97, pl. 2, f. 4,
6, £.5, 2, pl. 8, f. 7 (g) (1912) ; Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 281, pl. 54d, 60 g (1913).
= anemosa var. Dewitz, Nova Acta Acad. Nat Cur. Halle, Vol. 41 (2), p.. 17, 189 (1879).
Angola.
b. Acraea welwitschii alboradiata Aurivillius (4. anemosa ab. alboradiata), Rhop. Aethiop. p. 91 (1898);
Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 158 (1887); Proc. Zool. Soc. Lond. p. 28 (1894); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 97 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 281, pl. 54 ¢ (1913). — Pl Us Fig. 8.
Victoria Falls.
FAM. NYMPHALIDZ 29
c. Acraea welwitschii lobemba Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 97 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr.
Lep. p. 282, pl. 54¢ (as welwitschit) (1913).
= welwitschii Neave, Proc. Zool. Soc. Lond, p. 12, pl. 1, f. 2 (1910).
L. Bangweolo.
35. Acraea pseudolycia Butler.
al, Acraea pseudolycia pseudolycla forma astrigera Butler (A. astrigera), Proc, Zool. Soc. Lond. p. 421,
pl. 25, f. 5 (1899); Suffert, Iris, p. 23 (1904); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 12 (1910); Eltringham,
Novit. Zool. Vol. 18, p. 151 (1911); Eltringham (psewdolycia forma astrigera), Trans Ent. Soc. Lond. pl. 1,
f. 1, O, f. 10, 9; Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 281, pl. 60f (1913).
British East Africa, German East Africa, Rhodesia.
@, Acraea pseudolycia pseudolycia. ©, forma emini Weymer (A. eminz), Iris, p. 221, pl. 2, f. 2 (1903) ;
Suffert (A. emini), Iris, p. 23 (1904); Eltringham (A, astrigera, Q, forma emini), Novit. Zool. Vol. 18,
p. 151 (1911); Eltringham (A. pseudolycia, 2, forma emini), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 102, pl. 1, f. 2 (1912).
German East Africa.
a, Acraea pseudolycia pseudolycia forma brunnea Eltringham (4d. asirigera forma brunnea), Novit. Zool.
Vol. 18, p. 151 (1911); Eltringham (A. pseudolycia forma brunnea), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 102, pl. 1,
f. 4, S, f.3, 2 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 281, pl. 60f (1913).
Uganda, British East Africa, German East Africa, Angola, Rhodesia,
74. Acraea pseudolycia pseudolycia Butler, Cist. Ent. Vol. 1, p. 213 (1874); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond.
p. 658 (1893); Aurivillius (A. zefes var.), Rhop. Aethiop. p. 91 (1898); Eltringham (A. astrigera forma
pseudolycta), Vol. 18, p. 151 (1911); Eltringham (A. pseudolycia pseudolycia), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 101,
pl. x, f. 5, S, pl. 8, f. 8 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 281, pl. 60f (1913).
Angola.
36. Acraea turna Mabille.
a. Acraea turna turna Mabille, Pet. Nouv. Ent., Paris, Vol. 2, p. 158 (1877); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép
Vol. 1, p. 99, pl. 12, f. 8 9 (1885-1887); Aurivillius, Rhop, Aethiop. p. 95 (1898); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 105, pl. 8, f. 9 (g) (1912): Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 276 (1913).
Madagascar.
a'. Acraea turna turna forma marmorata Grose-Smith € Kirby (A. marmorata), Rhop. Exot. Vol. 10, p. 9,
pl. 3. f. 7, 8 (1892); Aurivillius (var. marmorata), Rhop. Aethiop. p. 95 (1898); Voeltzkow Exped. p. 315
(1909); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 105 (1912).
Madagascar.
37. Acraea egina Cramet.
a. Acraea egina egina Cramer (Pap.) Pap. Exot. Vol. 1, p. 64, pl. 39, f. F, G (1775); Staudinger, Exot.
Schmett. (A.), Vol. 1, p- 83, pl. 33 6 & Q (1885); Haase, Bibl. Zool. Vol. 8 (2), pl. 4, f. 26 (1891); Karsch,
Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 195, 198 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 92 (1898); Aurivillius
(metam), Arkiv. f. Zool. Vol. 3 (1). ff. (1905); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 13 (1910); Eltringham,
Afr. Mim. Butt. p. 66, pl. 6,f. 1, 2 (1910); Griinberg, Sitzb. Ges. Naturw. Freunde, Berlin, p. 148 (1910);
Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 514 (1911); Eltringham (metam), Trans Ent. Soc. Lond. p. 106, pl. 6,
f, 15 (larva), pl. 8, f. 1, pl. 16, f. 17 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 279, pl. 54d (1913).
= rudolphina Herbst (Pap.), Naturs. Schmett. Vol. 5, p. 7, pl, 81, f. 1, 2 (1792).
2 = persephone Fabricius (Pap.), Syst. Ent. Vol. 3 (1), p. 174 (1793); Godart, Enc. Méthod. (A.), Vol. 9,
p- 234 (1819).
= zidora Godart, Enc Meéthod. Vol. 9, p. 237 (1819); Lucas, Lep. Exot. pl. 52, f. 1 (1835); Blanchard, in
Cuvier, Régne Anim. Vol. 3 (Insecta), pl. 134, f. 2 (1836); Lucas, in Chenu, Enc. Hist. Nat. Pap.
p- 11, f. 33 (1853).
Seneyal, Sierra Leone, Gold Coast, Ashanti, Togo, Nigeria, Cameroon, Gaboon, Congo, Uganda, British
East Africa, German East Africa, Rhodesia, Nyassaland, Angola.
a‘, Acraea egina egina forma harrisoni Sharpe (A. harrisont), The Entomologist, p. 132 (1904); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 107 (1912).
= kivuensis Griinberg, Soc. Ent. Steglitz, Vol. 24, p. 145 (1910); Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 515 (1911).
British East Africa, Rhodesia, Nyassaland.
30 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
a, Acraea egina egina forma contraria Griinberg, Soc. Ent. Steglitz, Vol. 24, p. 145 (1910).
L. Kiruu.
a3. Acraea egina egina forma alba Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 412 (1913).
Sesse Island.
b. Acraea egina medea Cramer (P. medea), Pap. Exot. Vol. 1, p. 128, pl. 81, f. C, D (1775); Herbst, Naturs.
Schmett. Vol. 4, p. 200, pl. 80, f. 3, 4 (1790); Kirby. Handb. Lep. (A.), Vol. 1, p. 38, pl. 7, f. 4 (1894);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 92 (1898); Ann. Mus. Stor. Nat. Genova (3), Vol. 4 (1910); Eltringham
(A. egina medea), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 107, pl. 2, f. 1, 6 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep.
p-. 279, pl. 54d (1913).
= pasiphaé Fabricius (Pap.) Spec. Ins, Vol. 2, p. 33 (1781); Godart, Enc. Méthod. (A.) Vol. 9, p. 235 (1819);
Duncan, Nat. Hist. foreign Butt. p. 143, pl. 12, f. 4 (1837).
= medea Palisot de Beauvois (Pap.) Ins. Afr. Amér. p. 220, pl. 6, f. 2a, b (1805).
= saronis Hiibner (Telch.) Verz. bek. Schmett. p. 27 (1816).
Princes Island.
c. Acraea egina areca Mabille (A. aveca), Ann. Soc. Ent. France (6), 8 Bull. p. 169 (1888); Mabille & Vuillot,
Novit. Lep. Pt. 10, p. 100, pl. 14, f. 5 (1893); Butler, 29, Proc. Zool. Soc. Lond. (1893), p. 658 (1894);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 93 (1908); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 66 (1910); Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 107 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 279, pl. 54e (1913).
= khara Grose-Smith, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 128 (1889); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot.
pl. 2, f. 1, 2(1889) ; Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol, 6, p. 457 (1891).
British East Africa, German East Africa, Nyassaland.
38. Acraea cepheus Linnzus.
a, Acraea cepheus cepheus Linnzus (Pap.) Syst. Nat. Vol. 10, p 487 (1758); Linneus, Mus. Lud. Ulr. p. 252,
(1764); Clerck, Icones Ins. Vol. 2, pl. 43, f. 4 (1764); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. (A.), Vol. 1, p. 98,
pl. 12, f. 1, 2 (1885-1887); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 66 (1888); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 93
(1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 26 (1901); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 111, pl. 8,
f. 12 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 278, pl. 54f (1913).
Q = baumanni Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol. 4, p. 551, pl. 23, f. 2 (1889).
Gold Coast, Gaboon, Congo, Sudan, Angola.
al, Acraea cepheus cepheus forma abdera Hewitson (A. abdeva) Exot. Butt. pl. 1, f. 1, 2 (1852). Aurivillius,
@, Ent. Tidskr. Vol. 12, p. 200 (1891); Rhop. Aethiop. p. 93 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 112 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr, Lep. p. 278, pl. 547 (1913).
== cepheus Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 85 (1885).
Q = pheusaca Suffert, Iris, p. 25 (1904).
Nigeria, Cameroon, Fernando Po, Gaboon, Congo.
a®. Acraea cepheus cepheus forma eginopsis Aurivillius. Rhop. Aethiop. p. 93 (1898); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Sond. p. 112 (1912).
Togoland.
a3. Acraea cepheus cepheus forma sucepha Suffert, Iris, p. 25 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 112 (1912).
Gold Coast, Gaboon, Congo, Sudan, Angola.
a4, Acraea cepheus cepheus forma nigrescens Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p.112 (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 279, pl. 54f (as abdera, 2) (1913).
Localities as a3.
*a>. Acraea cepheus cepheus forma cepheana Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft 12, p. 95 (1913).
Cameroon,
39. Acraea petraea Boisduval.
a. Acraea petraea petraea Boisduval, Voy. Deley, Vol. 2, p. 589 (1847); Wallengren, Rhop. Caffr. p. 21
(1857); Hoppfer, Peters Reise, Ins. p. 373, pl. 34, f. 1, 4 (1862); Trimen, Rhop. Afr. austral. p. 100 (1862);
Oberthur, Etud. Ent. Vol. 3, p. 26, pl. 2, f. 4 (1878); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 85, pl. 33(1885);
Trimen, S. Afr. Butt. (metam.), Vol. 1, p. 144, 145 (1887); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 192 (1898) ;
Aurivillius, Rhop, Aethiop. p. 95 (1898) ; Fawcett (metam.), Trans. Zool. Soc. Lond. p. 294, pl. 46,f. 1, 2,
PAM. NYMPHALIDZE 31
3 (1901); Marshall, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 325 (1902); Dixey & Longstaff, ibidem, p. 318, 328 (1907);
Eltringham, ibidem, p. 114, pl. 8, f. 13, pl. 16, f. 4 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr Lep. p. 277,
pl. 54e, f (1913).
© = petrina, Suffert, Iris, p. 25 (1904).
German East Africa, Transvaal, Natal, East Griqualand.
a. Acraea petraea petraea forma taborana Suffert, Iris, p. 26 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
P- 114 (1912),
Locality as a.
2. Acraea petraea petraea forma rohlfsi Suffert, Iris, p. 124, pl. 3, f. 5 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 136, pl. 1, f. 7, O (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 277, pl. 60d (1913).
Ukerewe Island.
3. Acraea petraea petraea forma pseudacontias Wichgraf, Deutsche Ent. Zeitschr. p. 348 (1914).
No Locality.
40. Acraea guillemei Oberthur.
Acraea guillemei Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 10, pl. 1, f. 1 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p.97 (1898);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 117, pl. 9, f. 2 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 274,
pl. 55¢ (1913).
Ukerewe Island.
¢ = acutipennis Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond p. 3, pl. 1, f. 3 (1906).
Congo State, Angola.
41. Acraea diogenes Sufiert.
Acraea diogenes Suffert, Iris. Vol. 17, p. 14 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 156, pl. 16, f. 13(g)
(1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 273, pl. 55f (1913).
? 9 = guillemei), ibidem, p. 157, note.
= lactea Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 20, pl. 1, f. 7 (1910).
« Lower Guinea », Belgian Congo (Lufupa R.).
42. Acraea biittneri Rogenhofer.
Acraea biittneri Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol. 4, p. 553, pl. 23, f. 8 (1889); Rogenhofer, Verh.
Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 42, p. 575, f. 3 (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 95 (1898); Neave, Proc.
Zool. Soc. Lond. p. 14 (1910): Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond, p. 118, pl. 9, f. 1 (g) (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 277, pl. 54f (1913).
= felina Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 65, pl. 8, f. 5, 6 (1891).
Congo, North West Rhodesia, Angola, Damaraiand.
43. Acraea violarum Boisduval.
Acraea violarum Boisduval, Voy. Deleg. Vol. 2, p. 591 (1847); Wallengren, Rhop. Caffr. p. 21 (1857) ;
Trimen, Rhop. Afr. austr. p. 95 (1862); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1. p. 84 (1885); Trimen, S. Afr.
Butt. Vol. 1, p. 141, pl. 3, f. 4 (1887); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 191 (1898); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p. 95 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 120, pl. 9, f. 3, pl. 15, f. 20(g) (1912); Auri-
villius, in Seitz, Macr. Lep. p. 277, pl. 55a (1913).
= nataliensis, Angas, Kaff. Ill. pl. 30, f. 6 (1847).
Angola. Mashonaland, Transvaal, Natal, Caje Colony.
44. Acraea asema Hewitson.
a. Acraea asema asema Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 14, p. 52 (1877); Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond.
p- 24, pl. 4, f.3, 3a (1894); Marshall, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 555 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 99 (1898); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 14 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 122, pl.g
f. 4, pl. 15, f. 19(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr Lep. p. 278, pl. 55a (1913). (1)
= empusa Butler Proc. Zool. Soc. Lond. p. 656 (1893).
Angola, Manicaland, Mashonaland, Nyassaland.
(1) This figure is very unsatisfactory. The hind-wing spots being incorrectly drawn.
32 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
a!. Acraea asema forma gracilis Wichgraf, (A. violaywm gracilis), Berl. Ent. Zeitschr. p. 243, pl. 6, f. 7, 8 (1908);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 122 (1912).
Locality as a.
45. Acraea omrora Trimen.
a. Acraea omrora omrora Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 24 note (1894); Aurivillius. Rhop. Aethiop.
p- 95 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 124, pl. 9, f. 5, pl. 15, f. 21 (g) (1912).
= asema Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p.68, pl. 8, f. 9, 10, 10a (1891).
South Angola, Damaraland.
b. Acraea omrora umbrata Wichgraf. Eltringham, Trans, Ent. Soc. Lond. p. 124 (1912).
= violarum umbrata Wichgraf, Berl. Ent. Zeitschr. p. 242, pl 6, f. 5, 6 (1908).
= violarum omrora Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 14 (1910).
Katanga, North East Rhodesia.
46. Acraea lofua Eltringham.
Acraea lofua Eltringham, Novit. Zool. Vol 18, p, 150 (1911); Trans. Ent. Soc. Lond. Peek27up leg imino
f.9, 2, pl. 9, f. 12, 13(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 273, pl. 60¢ (1913).
North East Rhodesia.
47. Acraea nohara Boisduval.
a. Acraea nohara halali Marshall, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 555 (1896); Aurivillius (zohara var. halali), Rhop.
Aethiop. p. 97 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 128 (1908).
Mashonaland.
>, Acraea nohara pseudatolmis Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 129, pl.1, f. 6, & (1912).
South East Rhodesia.
c. Acraea nohara punctellata Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 129, pl 5, f. 9, & (1912) (1).
d. Acraea nohara nohara Boisduval, Voy. Deleg. Vol. 2, p. 590 (1847); Wallengren, Rhop. Caffr. p. 21 (1857);
Trimen, Rhop. Afr. Austral. p. 96. pl.3, f. 1 (1862); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 84, pl. 33 (1885);
Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 142 (1887); Trimen, Proc Zool. Soc. Lond. p, 24 (1894); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p. 97 (1898); Fountaine (metam), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 60, pl. 10, f. 14a, 14) (1911);
Oberthur, Etud. de Lép. comp. Vol. 5, p. 324, pl. 67, f. 646 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 128, pl.9, f. 8, pl. 16, f. 19(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 274, pl. 53c (1913).
= actiaca Hewitson, Exot. Butt. pl. 1, f. 3 (1852).
Portugese East Africa, Transvaal, Zululand, Natal.
d'!, Acraea nohara nohara ab junodi Oberthur, Etud. de Lép. comp. Vol: 5, p. 324, pl. 67, f. 647 (1911).
North Transvaal. (This 1s a mere aberration with irregularly confluent spots.)
48. Acraea chambezi Neave.
— Acraea nohara chambezi Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 21, pl. 1, f. 5 (1910) (part.); Eltringham
(A. chambezi), Novit. Zool. Vol. 18, p. 153 (1911); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 132, pl. 9, f. 10 (g) (1912).
North East Rhodesia.
49. Acraea mansya Eltringham.
Acraea mansya Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 153 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p, 135,
pl. t, f. 13, 6, f. 12, Q, pl. 9, f. 11 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 274, pl. 60a (1913).
— Acraea nohara chambezi Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 21 (1910) (part.)
North East Rhodesia.
50. Acraea onerata Trimen.
Acraea onerata Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 61, pl. 8, f. 7, 8, 8a (1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 97 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 135 (1912).
Damaraland.
(1) Prof. Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. expresses the opinion that this form belongs rather to guwillemei than to
nohava. He however disregards the fact that the mate armature is identical with that of zohara, If Oberthur's gwillemei is the
same as my punctellata, then it is guillemei which belongs to zohara and not punctellata to guillemet, H. E.
FAM. NYMPHALID 33
51. Acraea atolmis Westwood.
a. Acraea atolmis atolmis \Vestwood, in Oates, Matabele Land, Ent.,p.343, pl. F, f.3, 4 (1882); Westwood, ibidem,
(ed. 2), p. 351, pl. 6, f. 3, 4 (1889); Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 63, pl. 8. f. 1, 3(1891); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p 97 (1898); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 21 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p.137, pl. 9, f. 9, pl. 15, f. 27 (g) (1912) ; Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 274 (1913).
= acontias (forma aestiv.) Westwood, in Oates, Matabele Land, Ent., (ed. 1), p. 345, pl. F, f. 7, 8 (1882);
(ed. 2), p. 353, pl. 6, f. 7, 8 (1889); Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 64, pl. 8, f. 4 (1891); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep. p. 274, pl. 55c¢ (as atolmis) (1913).
= luxi Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol. 4, p. 550, pl. 23, f. 5 (1889).
a’. Acraea atolmis forma decora Weymer.
=acontias ab. decora Weymer, Ent. Zeitschr.. Guben, Vol. 16, p. 62 (1901); Weymer, Iris, p. 225, pl. 2,
f. 5 (1903); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond, p. 138 (1912).
Congo, Rhodesia, Angola, Damaraland.
52. Acraea periphanes Oberthur.
a. Acraea periphanes periphanes Oberihur, Etud. Ent. Vol.17, p. 20, pl 2, f. 23 (1893); Butler, Proc. Zool.Soc.
Lond. p. 657 (1894); Butler, ibidem, p, 116 (1896); Butler, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 107 (1897);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 97 (1908); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 19 (1910); Eltringham, Novit.
Zool. Vol. 18, p. 152 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 139, pl. 9, f. 6, 7 (g) (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 274, pl. 55d (1913).
Congo, Rhodesia, Nyassaland.
a'. Acraea periphanes forma umida Wichgraf. Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 140, pl. 5, f. 7, & (1912).
= onerata forma umida Wichgraf, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 53, p. 246, pl. 6, f. 10 (1908).
= periphanes forma marginata Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 153 (1911).
Rhodesia.
-. Acraea periphanes forma acritoides Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p.153 (1911); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 140, pl. 3, f. 11, g (1912).
= periphanes (part.) Neave, Proc, Zool. Soc. Lond. p. 20 (1910).
Rhodesia.
3. Acraea periphanes forma melaina Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 152 (1911); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 140, pl. 3, f. 10, G (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 274, pl. 39f (1913).
= periphanes (part.) Neave, Proc. Zool. Soc, Lond. p. 19 (1910).
Rhodesia.
a, Acraea periphanes forma beni Bethune-Baker, Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 152 (1911); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 139 (1912).
= Acraea beni Bethune-Baker, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 110 (1908).
Angola, Rhodesia.
53. Acraea aureola Eltringham.
Acraea aureola Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 149 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 142, pl 2,
f.8, 5, pl. 9, f. 14, 15 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 273, pl. 60¢ (1913)
Angola.
54. Acraea acrita Hewitson.
a. Acraea acrita bellona Weymer, Deutsche Ent. Zeitschr. p. 728 (1908); Strand. Mitt. Zool. Mus. Berl. p. 280
(1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 144, pl. 5, f. 4, g, pl. 10, f. 8, 11, pl, 16, f. 11 (g) (1912);
Aurivillius, in Seitz, Marc. Lep. p. 275, pl. 59f (1913).
Angola.
a'. Acraea acrita bellona forma bella Weymer, Ent. Zeitschr., Guben, p. 61 (1901); Weymer, Iris, p. 225,
pl. 2, f. 4(1903); Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. p. 281 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 144,
pl. 10, f. 13, 14 (g) (1912) (1)
Angola.
(1) By an unfortunate error the forma bella is given in my monograph under A. acritaambigua; its should be under
A. acrita bellona, as stated on p 152 (1. c.). —H.E.
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
b. Acraea acrita ambigua Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 70, pl. 9, f. 11 (1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 96 ‘1898); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 17 (1910; Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. p. 280 (1911);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 143, pl. 1o, f. 9, 12 (g) (1912).
Damaraland, Barotse, Rhodesia.
c. Acraea acrita acrita Hewitson, Exot. Butt. p. 3, f. 18 (1865); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 3, p. 381 (1889)
(part.); Proc. Zool. Soc. p. 28, pl. 4, f. 4 (1894); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 96 (1898); Neave, Proc.
Zool. Soc. Lond. p. 16 (1910) (part.); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 143, pl. 10, f. 1, 4, pl. 16, f.
10 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 275, pl. 556 (1913) (1).
cl. Acraea acrita acrita forma msamwiae Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. Vol. 5, 2, p. 282 (r911); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 143 (1912).
2, Acraea acrita acrita forma aquilina Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. p. 281 (1911); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 143 (1912).
>.
ti
c3. Acraea acrita acrita forma nyassicola Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. p. 282 (1911); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 143 (1912).
Manicaland, Rhodesia, Nyassaland, Port. East Africa.
d. Acraea acrita pudorina Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 84, pl. 33 (1885); Pagenstecher, Jahrb.
Hamburg Wiss. Anst. Vol. 10, 2, n° 6, p. 19 (1893); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 566 (1894) ; Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 520 (1895); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 96 (1898); Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl.
Vol. 5, 2, p. 281 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 144, pl. 10, f. 3, 6 (g) (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 275, pl. 556 (1913).
British East Africa, German East Africa.
d'. Acraea acrita pudorina forma utengulensis Thurau, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 48, p. 130, pl. 2, f.9 (1903);
Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. p. 281 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 144 (1912).
British East Africa, German East Africa.
*:!, Acraea acrita pudorina forma emboensis Baede, Ent. Rundschau, ». 51, no. 15 (1915).
Uganda.
e. Acraea acrita littoralis Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 144, pl. 10, f. 7, 10 (1912).
= acrita Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 3, p. 381 (1889) (part.).
German East Africa.
él. Acraea acrita littoralis forma aquilia Thurau (acri/a forma aquilia\, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 48, p. 129, pl.2,
f. 8 (1903); Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. Vol. 5, 2, p. 280 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Sec. Lond.
Pp. 144 (1912).
German East Africa.
&
t
*. Acraea acrita littoraliis forma chaeribulula Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. Vol. 5, 2, p. 281 (1911); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 144 (1912).
German East Africa.
cS
©.
3, Acraea acrita littoralis forma usaramensis, Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl. Vol. 5, 2, p. 282 (1911); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 144 (1912).
German East Africa.
f. Acraea acrita manea Thurau. Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 144, pl. 3, f. 8, G, pl. 10, f. 2, 5, pl. 16,
f. 12 (g) (1912).
= Acraea guillemei manea Thurau, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 48, p. 305 (1903).
German East Africa.
j!. Acraea acrita manea forma lindica Strand (acrita forma lindica), Mitt. Zool. Mus. Berl. p. 282 (1911).
Eltringham, Trans. Ent. Soc, Lond. p. 144 (1912).
German East Africa.
g. Acraea acrita forma pauperata Thurau, Berl. Ent. Zeitschr. p. 129 (1903); Strand, Mitt. Zool. Mus. Berl.
p- 281 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc, Lond. p. 144 (1912).
This form may occur anywhere. It differs only in absence of subbasal spot in fore-wing, area 10,
(1) This figure is hardly recognisable, the colour being and the spots incorrect. HE.
FAM. NYMPHALIDZ 35
56. Acraea chaeribula Oberthur.
Acraea chaeribula Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 19, pl. 2, f. 16 (1893); Aurivillius (acyita var.), Rhop.
Aethiop. p. 96 (1898); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 19 (1910); Strand (acrita forma), Mitt. Zool. Mus.
Berl. p. 282 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 153, pl. 9, f. 17, 18, pl. 16, f. 8 (g) (1912);
Aurivillius. in Seitz, Macr. Lep. p. 275, pl. 55d (1913).
Congo, German East Africa, Rhodesia, Nyassaland.
56. Acraea lualabae Neave.
Acraea lualabae Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 18, pl. 1, f. 4 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 155, pl. 9. f. 16 (g) (1912).
Lualaba R.
57. Acraea leucopyga Aurivillius.
Acraea leucopyga Aurivillius, Ent. Tidschr. Vol. 25, p 92, f. 32 (1904); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 22
(1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 157, pl. 12, f. 3, pl. 16, f 7 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz,
Grossmett. p. 273, pl. 55e 1913).
= liszti Suffert, Iris, Vol. 16, p. 17 (1904)
Rhodesia, Nyassaland.
58. Acraea intermedia Wichgraf.
Acraea intermedia Wichgraf, Berl. Ent. Zeitschr. p. 241, pl. 6,f. 3, 4 (1908); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond.
p- 22 (1910); Eltringham, Trans. Ent.Soc. Lond. p. 159, pl. 11, f. 3 (g) (1912).
Congo, Rhodesia.
59. Acraea caldarena Hewitson.
a. Acraea caldarena Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 14, p. 52 (1877); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 149(1887);
Westwood, in Oates, Matabele Land, Ent., (ed. 2), p. 355, pl. 5, f. 1, 2 (1889); Butler, Proc. Zoo). Soc. Lond.
p- 657 (1893); Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 27 (1894); Marshall, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 553 (1896);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 99 (1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 191, 906 (1898); Dixey, Proc.
Ent. Soc. Lond. p. 111 (1906); Dixey & Longstaff, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 344 (1907); Neave, Proc.
Zool. Soc. Lond. p. 25 (1910); Fountaine (metam), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 60, pl. 10, f. 15a, 15 (1911);
Eltringham,Trans, Ent. Soc. Lond. p. 161, pl. 11, f. 1 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, p. 271, pl. 55d (1913).
= amphimalla Westwood, in Oates, Matabele Land, Ent., p. 347. pl. 1, f. 1, 2 (1881).
= dircaea Westwood, ibidem, p. 348 (1881).
= recaldana Suffert, Iris, p. 27 (1904).
British East Africa, German East. Africa, Damaraland, Khamas, Rhodesia, Nyassaland, Portugese East
Africa, Transvaal, Natal.
a. Acraea caldarena caldarena forma neluska Oberthur (oncaea var. neluska), Etud. Ent. Vol. 3, p. 25, pl. 2,
f. 2, 3 (1878); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 161 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr, Lep. p. 271,
pl. 55d (1913).
= ombria Weymer, Stett. Ent. Zeit. p. 82 (1892).
Zanzibar, German East Africa.
a. Acraea caldarena caldarena, 2, forma nero Butler, Ann. Mag. Nat. Hist.(5), Vol. 12, p. 102 (1883); Auri-
villius, Rhop. Aethiop. p. gg, pl. 1, f. 3 (£898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 161 (1912).
« V. Nyanza >.
60. Acraea pudorelila Aurivillius.
2. Acraea pudorella pudorella Aurivillius (caldavena var.) Rhop. Aethiop. p. 99 (1898) ; Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 163, pl. 11, f. 5, pl. 15, f. 24 (g), pl. 3, f. 7, 5, (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 271,
pl. 55d (1913).
= braesia Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 337 (1884).
Abyssinia, British East Africa, German East Alrica.
4. Acraea pudorella detecta Neave (A. detecta), Proc. Zool. Soc. Lond. p. 24, pl. 1, f. 6, 6a (1910); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 164 (1912).
German East Africa, Rhodesia, Nyassaland.
36 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
61. Acraea rhodesiana Wichgraf.
Acraea rhodesiana Wichgraf, Berl. Ent. Zeitschr. p. 240, pl. 6, f. 1, 2 (1909); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 166, pl. 2, f. 6, S (r912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 270, pl. 600 (1913).
Rhodesia.
62. Acraea mima Neave.
Acraea mima Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 22, pl. 1, f. 8, 9 (1910); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 39, pl.3,
f. 5 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 167, pl. 12, f. 8(g) (1912).
Katanga, North East Rhodesia.
63. Acraea braesia Godman.
a. Acraea braesia braesia Godman, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 538 (1885\; Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot.
Vol.o9, p. 3, pl. 1, f. 7(188)); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. gor (1898); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 99 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 169, pl. 11, f. 7 (g) (1912).
— leucosoma Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1. p. 84 (1885).
Abyssinia, Somaliland, British East Africa, German East Africa.
a!, Acraea braesia braesia forma regalis Oberthur (A. vegalis), Etud. Ent. Vol. 17, p. 20, pl. 2, f. 20 (1893);
Holland, Ann. Mag. Nat. Hist. Vol. 6, 12, p. 249 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 99 (1898); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 169 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 221, pl. 55e (1913).
British East Africa, German East Africa.
64. Acraea doubledayi Guérin.
a. Acraea doubledayi sykesi Sharpe (A. sykes’), The Entomologist, p. 279 (1902); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 171 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 270, pl. 60¢ (as doubledayz) (1913).
= mystica Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 327 (1904).
Uganda, British East Africa, German East Africa.
b. Acraea doubledayi doubledayi Guérin, Lefébvre, Voy. Abyssinie, Vol. 6, p. 378 (1849); Reiche, Ferret &
Galinier, Voy. Abyssinie, pl. 33, f. 1, 2 (1849); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 99 (1898); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 171, pl. 2, f. 3, 6, pl. rr, f. 6 (gy) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 270,
pl. 55¢ (1913).
Abyssinia, Somaliland.
b\. Acraea doubledayi doubledayi forma rileyi Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 409 (1913).
Abyssinia.
b?. Acraea doubledayi doubledayi, 2°, forma candida Eltringham, Trans, Ent. Soc. Lond. p. 171 (1912).
Nyam Nyam.
c. Acraea doubledayi arabica Eltringham, Trans. Ent. Soc, Lond. p. 172, pl.2, f.2, O (1912).
South Arabia.
65. Acraea oncaea Hopffer.
a.Acraea oncaea oncaea Hopffer, Monatsb. Akad. Wiss. Berlin, p. 640 (1855); Hopffer, Peters Reise, Ins.
p. 375, pl. 24, f. 5, 8 (1862); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 84 (1885); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 100 (1898); Voeltzkow, Exped. Lep. p. 315 (1909); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 25 (1910);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 174, pl. 12, f. 5, pl. 15, f. 25 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr.
Lep. p. 268, pl. 55e (1913).
= deubledayi Trimen,S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 147 (1887); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 53, 191 (1898);
Dixey, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 11 (1900).
Congo, Abyssinia, Somaliland, British East Africa, German East Africa, Manicaland, Nyassaland,
Transvaal, Portugese East Africa, Natal, Cape Colony.
al, Acraea oncaea oncaea, 2, forma alboradiata Suffert, Iris, p. 28 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 174 (1912).
Ibidem.
FAM. NYMPHALIDA 37
2. Acraea oncaea oncaea, ©, forma modesta Suffert, ibidem, p. 28 (1904); Eltringham, ibidem, p. 174 (1912).
Ibidem.
a3, Acraea oncaea oncaea, ©. forma obscura Suffert, ibidem, p. 28 (1904); Eltringham, ibidem, p. 174 (1912).
Ibidem,
a+, Acraea oncaea oncaea, ©, forma defasciata Suffert, ibidem, p. 29 (1904); Eltringham, ibidem, p. 174 (1912).
Ibidem.
2, Acraea oncaea oncaea, ©, forma caoncius Suffert, ibidem, p. 27 (1904); Eltringham, ibidem, p. 174 (1912).
Ibidem.
b.Acraea oncaealiacea Suifert (caecrlialiacea), Iris,p.29 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p.174 (1912).
German East Africa.
66. Acraea equatorialis Neave.
a. Acraea equatorialis equatorialis Neave (Doubleday: equatorialis), Novit. Zool. Vol. 11, p. 327(1904); Eltrin-
gham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 157 (note) (1911); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 177, pl. 2, f. 10, 6, f. 11, 2;
pl. 12, f.6, pl. 15, t. 28 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 270 (aequatorialis), pl. 60 g (1913).
British East Africa.
ib. Acraea equatorialis anaemia Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 177, pl. 5, f. 5, & (1912).
= doubledayi equatorialis Aurivillius, Sjdstedt’s Exped. Milimandj. p. 4 (1910).
British East Africa, German East Africa.
67. Acraea ella Eltringham.
Acraea ella Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 151 (1911): Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 179,
pl. 2, f. 7, S, pl. 11, f. 8(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 270, pl. 600 (1913).
}
Angola.
68. Acraea axina \Vestwood. — PI. I, Fig. 6.
Acraea axina Westwood, in Oates, Matabele Land, Ent., p. 344, pl. F, f. 5, 6 (1881) (ed. 2), p. 352, pl. 6. f. 5,6
(1889); Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 66 (1891); Trimen, ibidem, p. 26 (1894); Aurivillius. Rhop.
Aeihiop. p. 99 (1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 905 (1898); Neave, ibidem, p. 25 (1910); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 180, pl. 12, f. 7(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 270, pl. 55¢ (1913).
= doubledayi var. Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 147 (1887).
Angola, Damaraland, Rhodesia, Transvaal, Nyassaland, Portugese East Africa.
69. Acraea caecilia Fabricius.
a. Acraea caecilia caecilia Fabricius (Pap ) Spec. Ins. Vol. 2, p. 34 (1781); Godart (A.) Enc. Méthod. Vol. 9,
p- 235 (1819); Godman, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 221 (1884); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 194
(1893, ; Carpenter, Proc. Roy. Soc. Dublin (2), Vol. 8, p. 305 (1895); Aurivillius, Rhop. Aethiop p. 100
1898); Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, p. 10 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 182, pl. 11,
f. 2(g\ (1912).
= bendis Hiibner, Verz. bek. Schmett. p. 27 (1816).
Senegal, Sierra Leone, Gold Coast, Ashanti, Togo, Nigeria, Uganda, Sudan, Abyssinia, Somaliland,
British East Africa, German East Africa.
a. Acraea caecilia caecilia, 9, forma hypatia Drury (Pap. /ypatia), 111. Exot. Ins. Vol. 3, p. 16, pl 13, f. 1, 2
(1782); Fabricius, Ent. Syst.Vol. 3, p. 163 (1793); Godart (A.) Enc. Méthod.Vol. 9, p. 232 (1819); Aurivillius
(cazcilia var. hypatia), Rhop. Aethiop. p. 100(1898 ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p 182 (1912).
Sierra Leone.
a, Acraea caecilia caecilia, 9, forma artemisa Stoll (Pap. avtemisa), Suppl. Cram. p. 123, pl. 25, f. 4, 4d (1790);
Aurivillius (? 2 caecilia), Rhop. Aethiop. p. 100 (1898): Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 182 (1912).
No locality.
*q3. Acraea caecilia caecilia forma nuda Wichgraf, Deutsche Ent. Zeitschr. p. 349 (1914).
German East Africa.
L. Acraea caecilia pudora Aurivillius, Sjdstedt’s Exped. Kilimandj. p. 4 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond p. 182 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 268, pl. 55g (1913).
British ast Africa, German East Africa.
38 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
b!, Acraea caecilia pudora forma umbrina, Aurivillius, Sjostedt’s Exped, Kilimandj. p. 4 (1910); Eltringham, ”
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 182 (1912).
Mt. Kilimandjaro.
70. Acraea marnois Rogenhofer.
Acraea marnois, Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol. 4, p. 552, pl. 23, f. 7 (1889): Aurivillius
(oxcaea var.), Rhop. Aethiop. p. 100 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p, 184, pl. 11, f. 4 (g) (1912).
Sudan (Bahr-el-Seraf), «V. Nyanza».
71. Acraea aglaonice Westwood.
a. Acraea aglaonice aglaonice Westwood, in Oates, Matabele Land, Ent., p. 346, pl. F, f. 9, 10(188r) (ed. 2),
p.353, pl. 6,t. 9, 10(1889); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 151, pl. 3, f. 3(1887); ibidem, Vol 3, p.398 (1889).
Proc. Zool. Soc. Lond. p. 27 (1894); Marshall, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 555 (1896); Aurivillius, Rhop,
Aethiop. p. 99 (1898); Trimen (ab. melan.), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 64, pl. 4, f. 4 (1906); Eltringham,
ibidem, p. 186, pl. 10, f. 16(g) (1912).
= Acraea fenestrata Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 435 (1881).
Manicaland, Mashonaland, Transvaal, Delagoa Bay, Natal.
*al, Acraea aglaonice aglaonice forma albofasciata Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 270 (1913).
Manicaland.
*a2. Acraea aglaonice aglaonice forma leucaspis Wichgraf, Deutsche Ent. Zeitschr. p. 345 (1914).
Johannisberg.
72. Acraea atergatis Westwood.
Acraea atergatis Westwood, in Oates, Matabele Land, Ent., p. 342, pl. F,f. 1,2(1881) (ed. 2), p. 350, pl. 6,
f. 1,2 (1889); Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 65 (1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 100(1898); Neave,
Proc. Zool. Soc. Lond. p. 25 (1910) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 190, pl. 10, f. 15 (g) (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 268, pl. 55f (1913).
Angola, Katanga, Rhodesia.
73. Acraea stenobea Wallengren.
Acraea stenobea Wallengren, Ent. Monatschr. Wien, Vol. 4. p. 35 (1860); Wallengren, Oefv. Vet.-Akad.
Forh. (3), Vol. 29, p. 49 (1872); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 153, pl. 3, f. 2 (1887); Proc. Zool. Soc.
Lond. p. 71 (1891); Westwood, in Oates, Matabele Land, Ent., (ed. 2), p. 354, pl. 6. f. 11, 12 (1889);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 98 (1898); Butler (caecil’a var.), Proc. Zool. Soc. Lond. p. 401 (1898);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. rgo, pl. ro, f. 15 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 271,
pl. 55¢ (1913).
= acronycta Westwood, in Oates, Matabele Land, Ent., (ed. 1), p. 346, pl. F, f. 11, 12 (188).
= natalica var. 9, Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 346 (1870).
= lygus Druce, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 408 (1875).
= albomaculata Weymer, Stett. Ent. Zeit. p. 83 (1892).
Angola, Damaraland, Khamas, Bechuanaland, Barotse, Mashonaland, German East Africa, Transvaal,
Cape Colony.
74. Acraea natalica Boisduval.
a. Acraea natalica pseudegina Westwood (A. pseudegina), Gen. diurn. Lep. p. 531 (1852); Aurivillius, Ent.
Tidskr. Vol. 14, p. 276 (1893); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 195 (1893); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p. 100 (1898); Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 186 (1903); Aurivillius, Ann. Mus. Stor.
Nat. Genova, p. 11 (504)(1910); Eltringham(metam), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 192, pl.6, f. 9 (larva)(1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 268, pl. 55/ (1913).
Portuguese Guinea, Sierra Leone, Gold Coast, Nigeria, Angola.
6. Acraea natalica natalica Boisduval, Voy. Deleg. Vol. 2, p. 500 (1847) ; Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1,
p. 83 (1885); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1. p. 155 (1887); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 66 (1888);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 101(1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 53(1898); ibidem, p. 26 (1901);
Dixey & Longstaff, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 318 (1907); Rogers, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 525 (1908);
Neave. Proc Zool. Soc. Lond. p. 26 (1910); Aurivillius, Sjéstedt’s Exped. Kilimandj. p. 4 (1910); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 192, pl. 12, f. 1(g) (1912); Aurivilius, in Seitz, Macr. Lep. p. 267, pl. 55f
(1913).
FAM. NYMPHALIDZ® 39
? = cephea Bertolini, Mem. Accad. Bologna, Vol. 2, p. 176 (1851).
= bellua Wallengren, Rhop. Caffr. p. 22 (1857).
= hypatia var. Trimen, Rhop. Afr. Austral. p. 98 (1862).
Angola, Congo, Barotse, Mashonaland. British East Africa, German East Africa, Nyassaland, Portu-
gese East Africa, Transvaal, Griqualand, Natal, Cape Colony.
6, Acraea natalica natalica forma umbrata Suffert, Iris, p. 30 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
P 192 (z912).
= natalica Hopffer, Peters Reise, Ins. p. 371, pl. 23, f. 12, 13 (1862).
Congo, British East Africa, German East Africa, Portugese East Africa.
6, Acraea natalica natalica forma albida Aurivillius, Mac. Lep. p. 268 (1913) (Acraea).
Pemba Island.
*63, Acraea natalica natalica forma mesoleuca Wichgraf, Deutsche Ent. Zeit. p. 349 (1914).
Durban.
¢. Acraea natalica abadima Ribbe (4. abadima), Iris, Vol. 2, p. 182, pl. 4, f. 2 (1889); Aurivillius, Ent. Tidskr.
Vol, 12, p. 201 (1891); Butler (psendegina var.), Proc. Zool. Soc. Lond. p. 731 (1895); Aurivillius (pseudegina
var.), Rhop. Aethiop. p. ror (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 192 (1912).
= clarei Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 327, pl. 1, f. 4 (1904).
Congo, Uganda, Abyssinia, British East Africa, German East Africa.
75. Acraea asboloplintha Karsch.
a. Acraea asboloplintha asboloplintha Karsch, Ent. Nachr, Vol.209, p. 223 (1894): Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p. 90 (1898); Heron, Trans. Zool. Soc. Lond. Vol. 19, p. 148 (1909); Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped.
p- 514 (1911); Eltringham, Trans. Zool. Soc. Lond. p. 196, pl. 12, f. 4, pl. 15, f. 23 (g) (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 283, pl. 544 (1913).
= dissociata Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 5, p. 350 (1898); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. p. 19, pl. 9,
f. 4, 5,6 (1901). :
= natalica var. dissociata Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 46 (1902).
North East Congo, Uganda, British East Africa.
6. Acraea asboloplintha rubescens Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 547 (1908); Eltringham, ibidem,
Pp. 196 (1912).
2 = asboloplintha, 9, Suffert, Iris, p, 19, pl. 2, f. 6 (1904).
British East Africa.
76. Acraea anacreon Trimen.
a. Acraea anacreon speciosa Wichgraf, Berl. Ent Zeitschr. p. 245, pl. 6, f. 6 (1908); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 198 (1912).
Angola.
4. Acraea anacreon bomba Grose-Smith (A. bomba), Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 3, p. 128 (1889); Grose-
Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 19, p. 8, pl. 3, f. 5, 6 (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop, p. 96
1898); Eltringham, Trans, Ent. Soc. Lond. p. 108, pl. 13, f. 3, pl. 15, f. 22, pl. 16, f. 14 (g) (1912).
= induna (forma aestiv) Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 184, pl. 5, f. 3, 3a (1895); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p. 96 (1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 905 (1898); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 16
(1910); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 276, pl. 556 (1913).
Angola, Rhodesia, Nyassaland, British East Africa, German Fast Africa.
c. Actaea anaereon anacreon Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 77, pl. 6, f. 3-5 (1865); ibidem, p. 347 (1870);
S. Af. Butt., Vol. 1, p, 168 (1887); Marshall, Trans. Ent- Soc. Lond. p. 552 (1896); Butler, Proc. Zool.
Soc. Lond. p. 841 (1897); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 107 (1897); Aurivillius, Rhop. Aeth. p. 96 (1898);
Eltrinyham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 198 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 276, pl. 55a, b
(1913).
Basutoland, Natal, Transvaal, Kaffirland, Nyassaland, German East Africa, Cape Colony.
da, Acraea anacreon anacreontica Grose-Smith (A. anacreontica), Novit. Zool. Vol. 5, p. 352 (1898); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p. 96 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 198 (1912). — lla Uo Fig.4 2 0
British East Africa.
40 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
77. Acraea rahira Boisduval.
Acraea rahira Boisduval, Faune Madag. p. 33, pl. 5, f. 4, 5 (1833); Boisduval, Voy. Deleg. Vol. 2, p. 580
(1847); Wallengren, Rhop. Caffr. p. 21 (1857); Trimen, Rhop. Afr. austral. p. 103 (1862); Mabille, Hist.
Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 110, pl. 11, f. 9, 10 (1885-1887); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 166 (1887);
Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 73 (1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 103 (1898); Fawcett (metam),
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 294, pl. 46, f. 7, 8, 9 (1901); Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 231, pl. 19,
f. 1, 1a, 1b (1904); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 26(1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 202,
pl 13, f. 1 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 267, pl. 55 g (1913).
Anzola, Damaraland, Rhodesia, Portugese East Africa, Transvaal, Natal, Cape Colony
78. Acraea zitja Boisduval.
a. Acraea zitja zitja Boisduval, Faune Madag. p. 32, pl. 4.f. 4, 5 (1833); Guenée, Vinson Voy. Madag. Annexe,
f. p. 35 (1864); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 108, pl. 11, f. 1, 2 (1885-1887); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p. 103 (1898); Voeltzkow, Exped. p. 316 (1909); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p.
204, pl. 13, f. 2 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 266, pl. 55g (1913).
a. Acraea zitja zitja, 2, forma radiata Guenée, in Vinson Voy. Madag. Annexe, f. p. 35, note 8 (1864); Mabille,
Hist. Nat Madag. Lép. Vol. 1, p. 109, pl. 11, f. 5, 6 (1885-1887); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 204 (1912).
a. Acraea zitja zitja, 2, forma ecalida Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (5), Vol. 2, p. 288 (1878); Mabille, ibidem,
Vol. 1, p. 109 (1887); Eltringham, ibidem (1912).
a5. Acraea zitja zitja, 2, forma rakeli Boisduval, Faune Madag. p. 32, pl. 5. f. 1, 2 (1833); Eltringham, ibidem
(1912).
= zitja, 2, Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 108, pl. 11, f. 3, 4 (1885-1887).
a‘, Acraea zitjazitja, 2, forma fumida Mabille, Ann, Soc. Ent. Belg. Vol. 23, Bull. p. 106 (1880); Mabille,
Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 109, pl. ga, f. 9 (1885-1887,; Eltringham, ibidem (1912).
Madagascar.
79. Acraea wigginsi Neave
Acraea wigginsi Neave, Novit. Zool. Vol.11, p 326, pl. 1, f. 3 (1904) ;Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 40, pl. 3,
f. 4 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 206, pl. 13, f. 4, pl. 16, f. 16 (g) (1912); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep, p. 276, pl. 60¢ (1913).
Uganda, British East Africa.
80. Acraea mirifica Lathy. — Pl. |, Fig. 7, ot.
Acraea mirifica Lathy, Trans, Ent. Soc. Lond. p. 2, pl. 1, f, 2, 6 (1906); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 14.
pl. 1, f. 3, 2 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lend.-p. 208, pl. 13, f. 5, pl. 16, f. 15 \(g) (1912),
Angola, North East Rhodesia.
81. Acraea encedon Linnzus.
a. Acraea encedon encedon Linnzus (Pap.) Syst. Nat. (ed. 10), p. 488 (1758); Linnaeus, Mus. Lud. Ulr.
Pp. 244 (1764); Aurivillius (4.), Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 19, 5, p. 56 (1882); Trimen, S. Afr. Butt.
Vol. 3, p. 163 (1889); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 110 (1898); Fawcett (metam), Trans. Zool. Soc. Lond.
p- 294. pl. 46. f. 4,5, 6(190r); Marshall & Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. pp. 479, 484 (1902) ; Dixey,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 151 (1903); Proc. Ent. Soc. Lond. p. 111 (1906); Heron, Trans. Zool. Soc. Lond.
Vol. 19, p. 147 (1909) ; Neave. Proc. Zool. Soc. Lond. p. 27 (1910); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 35, pl.
3, f 1, p. 36, pl. 8,f. 16 (1910); Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p.517 (1911); Eltringham. Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 209, pl. 14, f. 4 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 258, pl. 56¢ (1913).
= encedonia Linnzus (Pap.), Syst. Nat. (ed. 12), p. 762 (1767).
== sganzini Boisduval, Voy. Deleg. Vol. 2, p. 590 (1847).
= fulva Doubleday, Gen. diurn. Lep. p. 140, pl. 19, f. 2 (1848); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 83
(1885).
= lycia Wallengren, Rhop. Caffr., p. 22 (1857).
= lycia var. Trimen, Rhop. Afr. Austral. p. 103 (1862).
Sierra Leone to East Coast., Upper Egypt to Cape, Madagascar, Mafia Island.
al. Acraea encedon encedon forma infuscata Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 83 (1885); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p. 111 (1898); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 36 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 210
(1912).
FAM. NYMPHALIDZ® 41
. Acraea encedon encedon forma alcippina Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 111 (1898); Lathy, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 186 (1903); Heron, Trans. Zool. Soc. Lond. Vol. 19, p. 147 (190y); Eltringham, Afr. Mim.
Butt. p. 36, pl. 3, f. 3 (1910) ; Trans. Ent. Soc. Lond. p. 210 (1912).
3. Acraea encedon encedon forma sganzini Boisduval. Faune Madag. p. 34, pl. 6, f. 6, 7 (1833) ; Staudin-
ger, Exot, Schmett. Vol. 1, p. 83 (1885); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 65 (1888); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p 111 (1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 965 (1899); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 36
(1910) ; Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p.517 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 210
(1912).
= lycia Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 113, pl. 11, f. 11, 12 (1885-1887); Trimen, S. Afr. Butt.
Vol. 1, p. 164 (1887).
. Acraea encedon encedon forma lycia Fabricius (Paf. lyci), Syst. Ent. p. 464 (1775); Godart (A.), Enc.
Method. Vol. 9, p. 239 (1819); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 83 (1885); Butler, Proc. Zool. Soc.
Lond. p. 65 (1888); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 111 (1898) ; Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. pp. 53, 190,
400 (1898); p. 922 (1900); p. 46 (1902); Heron, Trans. Zocl. Soc. Lond. Vol. 19, p. 147 (1909) ; Eltringham,
Afr. Mim. Butt. p. 36 (1910); Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 518 (1911); Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 210 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 258, pl. 56 (1913).
= braunei Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, pl. 33 (1885).
. Acraea encedon encedon forma necoda Hewitson, Exot. Butt. pl. 2, f. 9 (861); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p. 111 (1898); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 36 (1910); Trans, Ent. Soc. Lond. p. 210 (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 258, pl. 56e¢(1913).
5. Acraea encedon encedon forma daira Goliman & Salvin (A. daira), Proc. Zool. Soc, Lond. p. 221,
pl. 17, f. 3 (1884); Butler, ibidem, p. 115 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 111 (1898); Butler, Proc.
Zool. Soc. Lond. pp. 420, 965 (1899); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 36, pl. 3, f. 2 (1910); Griinberg,
Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 518 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 210 (1912) ; Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 258, pl. 56g (1913).
= encedon ab. Q, Trimen, S. Afr. Butl. Vol. 1, p. 165 (1887).
= lycia var. Butler, Proc. Zool. Soc, Lond. p. 66 (1888).
= usagarae Vuillot, Ann. Soc. Ent. France, Vol. 60, Bull. p. 78 (1891).
= caecilia Butler, Proc, Zool. Soc. Lond. p. 566 (1894).
= encedon Lanz, Iris, Vol. 9, p. 131 (1896).
The above forms are not confined to any particular locality.
a’. Acraea encedon encedon forma radiata Aurivillius, Arkiv f Zool. (2), Vol. 12, p, 4 (1905); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 211 (1912).
Andamaua.
a8, Acraea encsdon encedon forma fumosa Aurivillius, in Seitz Macr., Lep. p. 258 (1913). (Acraea).
No Locality.
a°. Acraea encedon encedon forma ascrepticia Strand, Arch. f. Naturg. (78 A), Vol. 1, p. 81 (1912).
German East Africa.
a0. Acraea encedon encedon forma commixta Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 409 (1912).
Lagos.
82. Acraea goetzi Thurau.
Acraea goetzi Thurau, Berl. Ent. Zeitschr. (48) p. 132 (1903); Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 515
(1911); Eltringham, Trans. Ent Soc. Lond. p. 213, pl. 13, f. 14 (g) (1912).
= byatti Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 328, pl. 1, f. 17 (1904).
German East Africa, S. Tanganyika, Nyassaland.
83. Acraea excelsior Sharpe.
Acraea excelsior Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 192, pl. 17, f, 3 (1891); Karsch, Ent. Nachr. Vol. 23,
p- 371 (1897); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 104 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 215,
pl. 13, f. 12 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 266, pl. 56a (1913)
British East Africa, German East Africa, Nyassaland.
84. Acraea mirabilis Butler.
Acraea mirabilis Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 760, pl 47, f. 1 (1885); Butler, in James, Unknown Horn
of Africa, p. 236, f. 1 (1888); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 103 (1898); Dixey, Proc. Zool. Soc. Lond.
p. 11, pl.1, f. 4 (1900); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 216, pl. 13, f. 13 (g) (1912).
Somaliland.
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
85 Acraea uvui Grose-Smith.
a@ craea uvui balina Karsch (A. balina), Ent. Nachr. Vol. 18, p. 170 (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 106,
f. 11 (1898); Eltringham, Trans, Ent. Soc. Lond, p. 217 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 263,
pl. 566 (1913).
Cameroon, Angola.
Acraea uvui uvui Grose-Smith, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 5, p.168(1890); Aurivillius,Rhop. Aethiop. p.106
(1898); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904) ; Heron, Trans. Zool, Soc. Lond. Vol. 19, p. 147 (1909) ;
Aurivillius, Sjéstedt’s Exped. Kilimandj. p. 4 (1910); Grinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 517 (1911);
Eltringham, Trans. Ent. Soc, Lond. p. 217, pl. 13, f. 16 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 263,
pl. 56 (1913).
= minima Holland, The Entomologist, 25. Suppl. p. 89 (1892); Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 12, p. 249 (1893);
Proc. U.S. Nat. Mus. Vol. 18, p. 232 (1895).
Uganda, British East Africa, German East Africa.
b!. Acraea uvui uvui interruptella Strand, Iris Vol. 22, p. 106 (1009).
German East Africa.
86. Acraea lumiri Bethune-Baker.
a. Acraea lumiri lumiri Bethune-Baker, Ann. Mag. Nat. Hist. Vol. 2, p. 471 (1908); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. TU.ond. p. 219, pl. 4, f. 16, S, pl. 13, f. 15 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 264,
pl. 60 (g) (1913).
Cameroon, Congo.
*a!, Acraea tumiri lumiri forma camerunica Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12, p. 99 (1913).
Cameroon.
87. Acraea bonasia Fabricius.
a, Acraea bonasia bonasia Fabricius, (Pap.); Syst. Ent. p. 464 (1775); Trimen (Acraea),S. Afr. Butt. Vol. 1,
p. 174, note, (1887); Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 12, p. 202.(1891); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38,
p. 195 (1893); Aurivillius (metam.), Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 277, pl. 5, f. 1 (1893); Rhop. Aethiop. p. 105
(1898); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 26 (1910); Eltringham (metam.) Trans. Ent. Soc. Lond. p. 220,
pl. 6, f. 11, 12 (larva), pl. 13, f. 11 (g) (1912), Aurivillius, in Seitz, Macr, Lep. p. 263, pl. 566 (1913).
= eponina, ©, Cramer (Pap.) Pap. Exot. Vol. 3, p. 138, pl. 268, f. A, B (1780) ; Staudinger, Exot. Schmett.
Vol. 1, p. 84 (1885); 2, Iris, Vol. 9, p. 202 (1896).
= serena Herbst (Pap.) Naturs. Schmett. Vol. 4, pl. 82, f.6, 7, 0 non 2 (1790); Godart (A,) Enc. Méth.
Vol. 9, p. 232, non 2 (1810).
al. Acraea bonasia bonasia, 2, forma cynthius Drury (Pap.) Ill. Exot. Ins. Vol. 3, p. 52, pl. 37, f. 5, 6 (1782);
Butler (A.) Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 16, p. 271 (1895); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 220
(1912).
= cynthia, Herbst (Pap.) Naturs. Schmett. Vol. 4, p. 198, pl. 80, f. 1, 2 (1790); Godart (A.), Enc. Méthod.
Vol. 9, p. 234 (1819).
= eponina, Q (2ndf.), Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 202 (1896).
Portugese Guinea to Fernando Po, Congo to Lake Tanganyka & Toro, German East Africa.
a, Acraea bonasia bonasia, ©®, forma praeponina Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 202 (1896); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p. 105 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond, p. 221 (1912).
Congo.
a3, Acraea bonasia bonasia , 2, forma siabona Suffert, p. 32 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 221 (1912).
Togo.
* al, Acraea bonasia bonasia forma interruptana Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12. p.99 (1913).
Cameroon.
+. Acraea bonasia alicia Sharpe (A alicia), Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 5, p. 442 (1890); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p. 105 (1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 420 (1899); Heron, Trans. Zool. Soc. Lond
Vol. 19, p. 146 (1909); Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 150 (1910); Deutsch Zentr. Afr.
Exped. p. 517 (1911) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 221 (1912).
Q = cappadox, Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 23, pl. 1, f. 2 (1893).
oO = planesium Oberthur, ibidem, p. 24, pl. 1, f. 11 (1893).
Cameroon, Congo, Uganda, British East Africa.
FAM. NYMPHALIDA® 43
é!. Acraea bonasia alicia, 9, forma eabiroides Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 529 (1908); Eltringham,
ibidem, p. 221 (1912).
British East Africa.
o. Acraea bonasia alicia, 2, forma tenelloides Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 529 (1908); Eltringham,
ibidem, p. 221 (1912).
British East Africa.
¢. Acraea bonasia banka Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 221 (1912).
Abyssinia.
88. Acraea sotikensis Sharpe.
a. Acraea sotikensis sotikensis Sharpe, Proc. Zool Soc. Lond. p. 634, pl. 48, f. 1 (1891); Oberthur, Etud.
Ent. Vol. 17, p. 23 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 105 (1898); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346
(1904); Proc. Zool. Soc. Lond. p. 26 (1910); Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 517 (1911); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 227, pl. 13, f. 8(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 264, pl. 56)
(as praeponina) (1913).
Congo, Angola, Uganda, Abyssinia, British East Africa, Rhodesia.
a. Acraea sotikensis sotikensis forma supponina Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 204 (1896); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p. 105 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 227, pl. 4, f. 15, S (1912); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep. p. 264, pl. 56d (1913).
«W. Africa» (Staudinger), Katanga.
a®. Acraea sotikensis sotikensis forma katana Eltringham, Trans Ent. Soc. Lond. p. 227 (1912).
= sotikensis Neave (part.), Proc. Zool. Soc. Lond. p. 26 (1910).
Katanga.
* a3. Acraea sotikensis forma hansmeyeri Strand, Arch, f. Nature. 79, Abt. A. Heft. 2, p. 172 (1913).
5
German East. Africa.
* ai, Acraea sotikensis sotikensis forma rowenina Gaede, Ent. Rundschau p. 51, no. 13 (1915).
Uganda.
+6. Acraea sotikensis rowena Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 227 (1912).
= sotikensis Heron, Trans. Zool. Soc. Lond. Vol. 10, p. 146 (1909).
Mt. Ruwenzori.
89. Acraea cabira Hopffer.
a, Acraea cabira cabira Hopffer, Monatsb. Akad. Wiss. Berl. p. 640 (1855); Hopffer, Peters Reise, p. 378,
pl. 23, f. 14, 15 (1862); Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 205 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 106 (1898) ;
Sjéstedt's Exped. Kilimandj. p. 4 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 229, pl. 13, f. 9 (g¢)
(1912}; Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 263, pl 56c (1913).
= Acraea apecida var. flavomaculatus Lanz, Iris, Vol. 9, p. 130 (1896).
Congo, Uganda, British East Africa, German East Africa, Rhodesia, Nyassaland, Portugese East
Africa, Transvaal, Cape Colony.
@, Acraea cabira cabira forma apecida Oberthur (A. apfecida), Etud. Ent. Vol. 17, p. 23, pl. 2, f. 15 (1893);
Staudinger, Iris, p. 206 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 106 (1898); Butler, Proc, Zool. Soc. Lond.
p. 53 (1898); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904); Proc. Zool. Soc. Lond. p. 27 (1910); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 229 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 263, pl. 56¢ (1913).
= cabira var. Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 174 (1887) ; Rogenhofer, in Baumann, Usambara, p. 326 (1891).
Appears liable to occur in any locality.
a>. Acraea cabira forma abrupta Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 163, f.2 (1910); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 230 (1912).
Sesse Island.
a. Acraea cabira cabira forma natalensis Staudinger, Iris, p. 206 (1896); Gooch (metam), The Entomologist,
Vol. 14, p. 1 (1881); Trimen(metam), S. Afr. Butt. p. 174 (1887); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 106 (1898);
Sjéstedt’s Exped. Kilimandj. p. 4 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc, Lond. p. 230 (1912’.
44 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
= cabira Wallengren, Rhop. Caffr. p. 21 (1857); Staudinger, Exot. Schmett. p. 84, pl. 33 (1885); Trimen, S.
Afr. Butt. Vol. 1, p. 173 (1887).
= cynthia Trimen, Rhop. Afr. Austral. p. 108 (1862) (part.).
German East Africa, Manicaland, Delagoa Bay, Natal,
a‘, Acraea cabira cabira forma karschi Aurivillius (A. v/viana forma karschi), Rhop. Aethiop. p. 106, f. 13
(1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 230 (1912).
Cameroon, British East Africa.
a. Acraea cabira cabira forma biraca Suffert, Iris, p. 33 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 230 (1912).
German East Africa, Rhodesia
go. Acraea rupicola Schultze.
Acraea rupicola Schultze, Ent. Rundschau, Vol. 29, p. 92 (1912).
South Cameroon.
gt. Acraea viviana Staudinger.
Acraea viviana Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 204 (1806) ; Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 106, f. 12 (1898); Heron,
Trans. Zoo]. Soc. Lond. Vol. 19, p. 147 (1909); Grinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 517 (1911); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 233, pl. 13, f. 10 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 262,
pl. 56¢ (1913).
= cabira Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904).
Cameroon, Congo, Uganda, German East Africa.
92. Acraea acerata Hewitson.
a. Acraea acerata acerata Hewitson, Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 13, p. 381 (1874); Exot. Butt. pl. 7. f. 44
(1875): Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 730 (1895); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 104 (1898);
Eltringham (metam.), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 235, pl. 6, f. 13 (larva), pl. 13, f. 7 (gy) (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 264, pl. 56a (1913).
al, Acraea acerata acerata forma vinidia Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 11, p. 130 (1874); Exot. Butt.
pl. 7, f. 45, 46 (1875); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1. p. 84 (1885); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr.
Vol. 38, p. 195 (1893); Aurivillius (metam), Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 277, pl. 4, f. 3, 3a, 3b (1893); Rhop.
Aethiop. p. 105 (1898); Heron, Trans. Zool. Soc. Lond. Vol. 19, p. 147 (1909); Griinberg, Deutsch
Zentr. Afr, Exped. p. 515 (1911); Eltrmmgham, Trans. Ent. Soc. Lond. Vol. 19, p. 147 (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 264, pl. 56a (1913).
Abundant over the African region.
-. Acraea acerata acerata forma brahmsi Suffert (A. brahmsi). Iris, p. 15, pl. 3, f. 4 (1904); Eltringham,
Trans. Ent. Soc, Lond. p. 235 (1912).
T
Nigeria, Cameroon.
a3, Acraea acerata acerata forma diavina Suffert, Iris, p. 31 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 235 (1912).
Cameroon.
a4, Acraea acerata acerata forma tenella Rogenhofer (A. tenella), Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol. 6, p. 457,
pl. 15, f. 1 (1891); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 114 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 105 (1898);
Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 516 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 235 (1912).
= abboti Holland, The Entomologist, Vol. 25, Suppl. p. 89 (1892); Proc. U. S. Nat. Mus. Vol. 18, p 233,
pl. 7, f. 1 (1895).
Abyssinia, British East Africa, German East Africa.
a°. Acraea acerata acerata forma ruandae Griinberg (u/uidia forma rvuandae), Deutsch Zentr. Afr. Exped.
p. 516, pl. 11, f. 6 (1911).
Ruanda.
*a°. Acraea acerata acerata forma burigensis Strand, Arch. f. Naturg.Vol. 79, Abt. A. Heft. 12, p. 171 (1973).
German East Africa.
*g3. Acraea pullula Griinberg.
Acraea pullula Grinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 516, pl. 11, f. 7 (1911).
(? acerata ab.)
German East Africa.
FAM. NYMPHALIDA® 45
g4. Acraea terpsichore Linnzus.
a. Acraea terpsichore terpsichore Linnzus (Pap.), Syst. Nat. (ed. ro), p. 466 (1758); Mus. Ulr. p. 222 (1764);
Seba, Locuplet. Rerum Nat. Vol 4. pl. 27, f. 29, 30 (cepheus var.) (1765); Butler (A.), Proc. Zool. Soc.
Lond. p. 655 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 104 (1898); Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, p. 11, 504
19£0); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 239, pl. 13, f. 6 (g) (1912).
— serena Fabricius (Pap.), Syst. Ent. p. 461 (1775); Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 5, p. 19, pl. 82, f. 8, 9,
non & (1792); Godart (4.), Enc. Méth. Vol. 9, p. 232. 2 non O' (1819); Oberthur, Ann. Mus. Stor. Nat.
Genova, Vol. 15, p. 157, 184 (1879); Snellen, Tijdschr. v. Ent. Vol. 25, p. 216 (1882); Staudinger, Exot.
Schmett. Vol. 1, p. 83 (1885); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 195 (1893); Butler, Proc, Zool. Soc,
Lond. p. 115 (1896); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904); Proc. Zool. Soc. Lond. p. 26 (1910);
Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 149 (1910).
= eponina Cramer (Pap.), Pap. Exot. Vol. 3, p. 138, pl. 268, f. C. D. (non A. B.) (1780).
= liberia Butler, Trans Ent. Soc. Lond. p. 525 (1870).
= manjaca Snellen, Tijdschr. v. Ent. Vol. 15, p. 11 (1872).
al, Acraea terpsichore terpsichore, 9°, forma janisca Godart (A. javisca), Enc. Méthod. Vol. 9, p. 233 (1819);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. ro4 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 239 (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 264, pl. 56a (1913).
a2. Acraea terpsichore terpsichore forma rougeti Guerin (A. rougeti), Lefebvre, Voy. Abyssinie, Vol. 6,
p- 368, pl. 10, f. 6, 7 (1849); Aurivillius, Rhop, Aethiop. p. 104 (1898); Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf.
Freunde, Berlin, p. 149 (1910); Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 515 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 239 (1912).
= manjaca Wallengren, Rhop. Caffr. p. 22 (1857).
— serena Trimen, Rhop. Afr. Austral. p. 107 (1862); Hopffer, Peters Reise, Ins. p. 377 (1862); Staudinger,
Exot. Schmett. Vol. 1, p. 83, pl. 33 (1885).
— manjaca Boisduval, Faune Madag. p. 33, pl. 4, f. 6. pl. 5, f. 6, 7 (1833); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p- 104 (1898); Voeltzkow, Exped. p. 316 (1909).
= serena Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 111, pl. 11, f. 7, 8 (1885-1887).
— buxtoni Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 16, p.395(1875); Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 170 (1887);
Proc. Zool. Soc. Lond. p. 74 (1891); Fawcett (metam), Trans. Zool. Soc. Lond. p. 295, pl. 46, f. 10, 11, 12
(1gOT).
— perrupta Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (5), Vol. 12, p. £02 (1883); Proc. Zool. Soc. Lond. p. 400 (1898).
— eliana Strand, Arch. f. Naturg. 77, 4, p. 87 (1911).
a3. Acraea terpsichoreterpsichore forma melas Oberthur(d. melas), Etud. Ent. Vol. 17, p. 24, pl. 1, f. 13
(1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 104 (1898); Eltringham, Trans. Ent.Soc. Lond. p. 239 (1912).
at, Acraea terpsichore terpsichore forma subserena Grose-Smith (A. subserena), Novit. Zool. Vol. 7,p 544
(1900); Rhop. Exot. Vol. 8, p. 28, pl. 8, f. 5, 6 (r90r); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 239 (1912).
S. Leone.
a5. Acraea terpsichore terpsichore forma venturina Thurau (A. venturina), Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 48,
p- 303 (1903); Suffert, Iris, p. 31 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 240 (1912).
Uganda.
a, Acraeaterpsichore terpsichore forma connexa Thurau (ab. conneva), Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 48, p. 304
(1903); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 240 (1912).
Nguruman.
a. Acraeaterpsichoreterpsichore forma intermediana Strand (A. intermediana), Mitt. Zool. Mus. Berl.
p- 283, f. (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 240 (1912).
German East Africa.
Special localities are given for the above named forms. Generally A. terpsichore occurs all over the African
Region South of the Sahara.
a. Acraea terpsichore terpsichore forma ventura Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 14, p. 51 (1887);
Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 655 (1893; ibidem, p, 565 (1894); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 104
(1898); Neave, Proc. Zool. Soc. p. 26 (1910); Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 149
(1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 240 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 264, pl. 56a
(1913).
= terpsichore var. bukoba Weymer, Iris, p. 225, pl. 2, f. 6 (1903).
Uganda, British East Africa, German East Africa, Congo(Lualaba), North East Rhodesia.
46 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
a), Acraea terpsichore terpsichore forma toka Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 77 (1), (4), p. 87 (1912).
* a0. Acraea terpsichore terpsichore forma janiscella Strand, Rev. Zool. Afr. p. 480 (1913).
* all, Acraea terpsichore terpsichore forma contraria Strand, Arch. f. Naturg. 78. Vol. p. 81 (1912).
German East Africa.
>. Acraea terpsichore rangatana Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 240, pl. 5, f. 2, S (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 265, pl. 60a (1913).
—ventura Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p, 565 (1894).
British East Africa.
c. Acraea terpsichore ochrascens Sharpe (4. ochrascens , The Entomologist, p. 40 (1902); Eltringham, Trans.
Ent. Soc, Lond. p. 240 (1912). — Pl. |, Fig. |.
Uganda (Buka Bay).
* o4a. Acraea bergeri Baede, Ent. Rundschau, p. 51, no. 12 (1915). Mount Kenia.
95. Acraea oberthuri Butler.
a. Acraea oberthuri obserthuri Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 16, p. 231 (1895); Aurivillius, Rhop.
Aethiop. p. 107 (1898); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 82, pl. 8, f. 14 (1910); Eltringham (metam.),
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 249, pl. 6, f. 14 (larva) , pl. 13, f. 17(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep.
p. 262, pl 56¢ (1913).
= bonasia Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 84 (1885) (non Fabricius).
-= eynthius Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 27, pl. 1, f, 5 (1893).
Nigeria, Calabar, Cameroon, Fernando Po, Gaboon, Congo.
a!, Acraea oberthuri oberthuri forma confluens, Suffert, Iris, p. 23 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 249 (1912).
Nigeria, Cameroon.
96. Acraea althoffi Dewitz.
a. Acraea althoffi pseudepaea Dudgeon (A pseudepaea), Proc. Ent. Soc. Lond. p. 111 (1909) ; Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 252 (1912). — lla Up Lelio 2. ie)
Ashanti, Nigeria.
s
. Acraea althoffi althoffi Dewitz, Ent. Nachr. Vol. 15, p. 102, pl. 1, f. 5 (1889); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p. 107 (1898); Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 7, p. 544 (1900); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. p. 28,
pl. 8, f. 3, 4, 2 (1901); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 8
(1910); Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 150 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 251, pl. 14, f. 1(g) (1912). Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p 262, pl. 56d (1913).
Congo, Uganda.
bl. Acraea althoffi althoffi forma rubrofasciata Aurivilliis, Ent, Tidskr. Vol. 16, p. 111 (1895); Rhop. Aethiop.
p. 107 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 252 (1912).
)2. Acraea althoffi althoffi, 2, forma telloides Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 252 (1912).
— althoffi 2, f. 3, Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 82, pl. 8, f 12 (1910).
Uganda.
03. Acraea althoffi althoffi, 2°, forma drucei Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 252 (1912).
= althoffi, °,f. 1, Eltringham, Afr. Mim, Butt. p. 82 (1910).
Uganda.
)4. Acraea althoffl althoffi, 2, forma ochreata, Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 252 (1912).
Uganda.
97. Acraea pharsalus Ward.
a. Acraea pharsalus pharsalus Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 8, p. 81 (1871); Afr. Lep. p. 8, pl. 6, f. 7, 8
(1873); Dewitz, Nov. Act. Acad. Nat. Cur. Halle, Vol. 41 (2), no. 2, p. 5, (177) (1879); Mabille, Hist. Nat.
Madag. Lép. Vol. 1, p. 100, pl. 12, f. 3, 4 (1885-1887); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 195 (1893)5
FAM. NYMPHALIDA® 47
Aurivillius (metam), Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 275, pl. 4, f. 1a, 10, 1¢, 1d (1893); Rhop. Aethiop. p. 110
(1898); Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 186 (1903); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904); Strand,
Wien. Ent. Zeit. Vol. 29 (1), p. 29 (tgro); Aurivillius, Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, p. 19, (512), 25, (518)
(1910); Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 150 (1910); Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 517
(1911); Eltringham (metam), Trans. Ent. Soc. Lond. p 256, pl. 6, f. 7 (larva), pl. 14, f. 8 (g) (1912); Auri-
villius, in Seitz. Macr. Lep. p. 258, pl. 36d (1913).
Senegal to Angola, Congo to East Coast.
al. Acraea pharsalus pharsalus forma pharsaloides, Holland, The Entomologist, Suppl. p. §9 (1892);
Proc. U. S. Nat. Mus. p. 232, pl. 7, f. 3 (1895); p. 747 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 110 (1898);
Rogers, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 525 (1908); Aurivillius, Sjéstedt’s Exped. Kilimandj. p. 4 (1910);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 256 (1912).
= saluspha Suffert, Iris, p. 34 (1904).
Angola, British East Africa, German East Africa.
a?, Acraea pharsalus pharsalus forma pallidepicta Strand, Int. Ent. Zeit., Guben, Vol. 41, p. 220 (1911);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 257 (1912).
German East Africa.
a*, Acraea pharsalus pharsalus forma nia Strand. Int. Ent. Zeit., Guben, Vol. 41, p. 220 (1911); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 257 (1912).
German East Africa.
5. Acraea pharsalus rhodina Rothschild, Novit. Zool. Vol. 9, p. 595 (1902); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 257 (1912).
Abyssinia.
¢. Acraea pharsalus vuilloti Mabille (A. vuilloti), Ann. Soc. Ent. France (6), Vol. 8, Bull. p. 170 (1888);
Mabille & Vuillot, Novit. Lep. Vol. 2, p. to, pl. 2, f. 1 (1890); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 110 (1898);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 257, pl. 1, f. 11, GO (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p.
258, pl. 56d (1913).
German East Africa.
98. Acraea perenna Doubleday.
a. Acraea perenna perenna Doubleday, Gen. diurn. Lep. pl. 19, f. 4 (1848); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond.
p. 66 (1888) ; Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 93 (1898); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904); Strand,
Wien. Ent. Zeit. (29), Vol. 1, p. 29 (1910); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 14 (1910); Griinberg, Sitzb.
Ges. Nat. Freunde, Berlin, p. 149 (1910); Deutsch Zentr, Afr. Exped. p. 515 (1911); Eltringham (metam),
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 261, pl. 6, f. 6 (larva), pl. 15, f. 4(¢) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p.
279, pl. 54¢ (1913).
= polydectes Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 8, p. 81 (1871); Afr. Lep. p. 8, pl. 6, f. 5, 6 (1873).
Sierra Leone to Uganda, British East Africa, German East Africa.
*ql. Acraea perenna perenna forma usagara, Strand. f. Arch. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft, 12, p. 172 (1913).
German East Africa.
5. Acraea perenna kaffana Rothschild, Novit. Zool. Vol, 9, p. 595; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
Pp. 262 (1912).
Abyssinia.
c. Acraea perrena thesprio Oberthur (A. thesprio), Etud. Ent. Vol, 17, p. 21, pl. 3, f. 34 (1893); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p. 93 (1898); Sjéstedt’s Exped. Kilimandj. p. 3 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 262 (1912); Aurivillius, in Seitz. Macr. Lep., p. 279, pl. 54¢ (1913).
British East Africa, German East Africa, Katanga, Nyassaland.
99. Acraea orina Hewitson.
a. Acraea orina orina (1) Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 11, p. 130 (1874); Exot. Butt. pl, 7, f. 43, 48
(1875); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 263 (1898); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 69 (1910; Grinberg,
Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 518 (? ovineta) (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 263, pl. 15,
f. 3(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 256, pl. 574 (1913).
(1) Hewitson’s A. derbela is a melanic aberration which may as Aurivillius suggests, belong to A. orina.
48 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
9° — oreta Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 11, p. 131 (1874); Exot. Butt. pl. 7, f. 42 (1875).
Ashanti to Congo (to the Ituri R.).
al, Acraea orina orina forma nigroapicalis, Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 275 (1893); Rhop. Aethiop.
p. 113 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 264 (1912).
Cameroon, Uganda.
a. Acraea orina orina forma orinata, Oberthur, (A. ovinata), Etud. Ent. Vol. 17, p. 22, pl. 2, f. 22 (1893);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 113 (1912); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 264 (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr, Lep. p. 256, pl, 57 a (1913).
Congo.
>. Acraea orina orineta Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 264.
2° = orinata 92, Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 44, pl. 1, f. 1(1902).
So = orina, Eltringham, Afr. Mim. Butl. p. 69, pl. 6, f. 11 (1910).
British East Africa.
too. Acraea peneleos Ward.
a, Acraea peneleos peneleos Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 8, p. 60 (1871); Afr. Lep.p. 7, pl. 6. f. 3, 4 (1873);
Dewitz, Nov. Acta Acad.Nat. Cur. Halle (41) Vol.2,no. 2, p. 19 (part. (1879); Staudinger, Iris,Vol.9,p 196
(1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 113 (1898); Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 186 (1903); Eltrin-
gham (metam.), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 268, pl. 4. f. 10, 6, t. 12, 2, pl. 6, f. 4 (larva), pl. 13, f. 27 (g)
(1912).
= fenelos Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 273, f. 5 (1893).
Sierra Leone to Congo (Kassai R.).
al, Acraea peneleos peneleos, °&. forma helvimaculata Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 269, pl. 4,
f, 11 (1912).
Lagos.
2. Acraea peneleos peneleos, °, forma lactimaculata Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. pl. 3, f. 3 (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 255, pl. 60a (1913).
a
Fernando Po.
a3, Acraea peneleos peneleos, 2, forma sepia Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 269 (1912).
b. Acraea peneleos pelasgius Grose-Smith (A. pelasgius), Novit. Zool. Vol. 7, p. 545 (1900); Rhop. Exot. p. 25,
pl. 7, f.. 9, 10, 2 non G, (1901); Neave, Novit. Zool. Vol. 12, p. 346 (1904); Griinberg (pfeneleos), Sitzb. Ges.
Naturf. Freunde, Berlin, p. 150 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 269, pl. 4, f. 2, S (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 255, pl. 570 (1st fig.) (1913).
Cameroon, Gaboon, Congo, Angola, Uganda.
o = pseudopelasgius Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12, p. 103 (1914) (1).
c. Acraea peneleos gelonica Rothschild & Jordan, Novit. Zool. Vol. 12, p. 183 (1905); Eltringham, Trans, Ent.
Soc. Lond. p. 269 (1912).
tor. Acraea pelopeia Staudinger.
Acraea pelopeia Staudinger (feneleos var.), Iris, Vol. 9, p. 192 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 113
(1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 274, pl. 13, f. 28(g) (1912).
= tropicalis, Blachier, Bull. Soc. Lép. Genéve, p. 174, pl. 15, f. 2 (1922).
Congo.
102. Acraea grosvenori Eltringham.
Acraea grosvenori, Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 276, pl. 2, f. 9, S, pl. 13, f. 4 (g) (1912); Aurivillius,
in Seitz, Macr. Lep. p. 255, pl. 60) (1913).
Congo (Rutschuru R.).
(x) Dr Strand (J. ¢.) expends considerable space in pointing out what he conceives to be aserious error on my part,
in that my figure of peeleos pelasgius does not agree with Grose:Smit’s figure of pelasgius type. He has however failed to
observe that Grose-Smith’s figure is arepresentation of the female, whereas my figure shows the male. Grose-Smith error
in the sex of his specimen is duly pointed out in my monograph.
FAM. NYMPHALIDZ 49
103. Acraea parrhasia Fabricius. — Pl. |, Fig. 12b.
a. Acraea parrhasia parrhasia Fabricius (Pap.), Ent. Syst. Vol. 3,1, p. 175 (1793); Aurivillius (metam)
peneleos), Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 274, pl. 4, f. 2, 2a, 2b (1893); ibidem, Vol. 15, p. 273 (1894); Staudinger,
Iris, Vol. 8, p. 200 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 113 (1898); Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 186 (1903); Eltringham (metam), ibidem, p. 277. pl. 3, f.1. 9, pl. 4, f. 3, S, pl. 6, f. 3 (larva), pl. 15, f. 2 (g)
1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 255, pl. 59e (1913).
Sierra Leone, Nigeria, Fernando Po.
1. Acraea parrhasia parrhasia, 9, forma oppidia Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 11, p. 131 (1874);
Exot. Butt. pl. 7, f. 49, 50 (1875); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 113 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 278 (1912) ; Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 255, pl. 57@ (1913).
Fernando Po.
a2, Acraea parrhasia parrhasia, 0. forma leona Staudinger (4. leona), Iris, Vol. 9, p. 199 (1896); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p. 113 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 278, pl. 3, f. 2 (1912).
= igola leonina Bethune-Baker, Ann. Mag. Nat. Hist. Vol. 12, p. 325 (1903).
Sierra Leone.
a5, Acraea parrhasia parrhasia, 0, forma parrhoppidia Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 201 (1896); Aurivillius,
Rhop. Aethiop. p. 113 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 278 (1912).
Cameroon.
* ai, Acraea parrhasia parrhasia forma pseudoppidia Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12, p. 103
(1913).
Cameroon.
104. Acraea penelope Staudinger.
a. Acraea penelope derubescens Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 281, pl. 4, f.5 (1912); Aurivillius
in Seitz, Macr. Lep. p. 254, pl. 57) (2nd fig. as peneleos) (1913).
Toyoland.
6. Acraea penelope translucida Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 281, pl. 4, f. 4, 6, f. 6, 2 (1912) ; Auri-
villius, in Seitz, Macr. Lep. p. 254, pl. 60¢ (1913).
Nigeria (Lagos).
c. Acraea penelope penelope Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 195 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 113 (1898);
Grinberg, Sitzb. Ges. Nat. Freunde. Berlin, p. 130 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 281, pl.
13, f. 18 (g) (1912); Aurivillius,in Seitz, Macr. Lep. p. 254, pl. 570 (1913).
= pomponia Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 7, p 545 (1900); Rhop. Exot. Vol. 7, p, 25, pl. 7, f. 7, 8 (1901);
Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p.-346 (1904).
Congo to Uganda.
|. Acraea penelope penelope,®, formaargentea Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 281, pl. 4, £.8 (1912).
o
Uganda.
c*. Acraea penelope penelope, 2, forma exalbescens Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 281 (1912).
Uganda.
©. Acraea penelope penelope, 2, forma penella Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 281, pl. 5, f. 3 (1912).
Uganda.
4. Acraea penelope penelope, 2, forma sulphurescens Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p.251(1913) (Acraea).
d. Acraea penelope vitrea Eltringham, Trans. Ent. Soc. Sond. p. 281, pl. 4, f. 7 (1912).
British East Africa.
105. Acraea newtoni Sharpe.
Acraea newtoni Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 554 (1893); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 5,
p.17, pl. 5, f. 8,9 (1894); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 113 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 285 (1912).
Sao Thome.
106. Acraea mairessei Aurivillius.
a. Acraea mairessei mairessei Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 25, p. 93, f. 33 (1904); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 286, pl. 13, f. 19(g) (1912).
50 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
= servona (nec Godart), Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 113 (1898).
= melanosticta Sharpe, The Entomologist, p. 181 (1904).
Congo to Uganda.
a’. Acraea mairessei mairessei forma dewitzi Aurivillius, Ent. Tidskr. p. 94 (1904); Eltringham, Trans.
Ent. Soc, Lond. p. 286 (1912).
= peneleos var. Dewitz, Nov. Act. Acad. Nat. Cur. Halle (41), Vol. 2, p. 19, pl. 1, f. 7 (1879).
Congo (Kassai).
*qa2, Acraea mairessei mairessei forma nyongana Strand, Arch. f. Naturg.Vol.79, Abt. A, Heft. 12, p. 104 (1913).
Cameroon,
107. Acraea melanoxantha Sharpe.
Acraea melanoxantha Sharpe, Proc. Zool. Sec. Lond. p. 193, pl. 17, f. 4 (1891); Aurivillins, Rhop, Aethiop.
p. 114 (1898) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 288 (1912).
Mt. Elgon.
108. Acraea conraati Oberthur.
a. Acarea conradti conradti Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 22, pl. 1, f. 10 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p. 112 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 289, pl. 13, f. 21g (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr.
Lep. p. 257, pl. 56/ (1913).
German East Africa, Nyassaland.
a'. Acraea conradti, 2, forma flavescens Blachier, Bull. Soc. Lép. Genéve, Vol. 2, p. 175, pl. 15, f. 3 (1912).
German East Africa.
tog. Acraea buschbecki Dewitz.
1889); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 112
’
Acraea buschbecki Dewitz, Ent. Nachr. Vol. 15, p. 102, pl. 1, f. 2 (
(1898) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 291, pl. 13, f. 20(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep.
p. 256, pl. 57a(1913).
= zaire Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol. 4, p. 551 (1889).
Cameroon, Congo.
110. Acraea servona Godart.
a. Acraea servona servona Godart, Enc. Méthod. Vol. 9, p. 239, 2 (1819); Grimshaw, Trans. Roy. Soc. Edin-
burgh, Vol. 39 (1897), p. 4 (1898); Aurivillius, Ent. Tidskr. p. 94 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 292, pl. 13, f. 22(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 253. pl. 570 (1913).
= lycoides Boisduval, Spec. gen. Lép. Vol. 1, pl. 11, f. 5g Q (1836).
=circeis var. lycoides Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 114 (1898); Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped.
p. 518 (1911).
= dejana, ©, Godman « Salvin, Hist. Relief Exped. p. 431 (1890); Grose-Smith (circe?s var.), Proc. Zool. Soc.
Lond. p. 466 (1890); Sharpe (éebiae), Ann. Mas. Nat. Hist. (6), Vol. 19, p. 581 (1897) ; Grimshaw, Trans.
Roy. Soc. Edinburgh, Vol. 39 (1897), p. 4 (1898).
Cameroon, Gaboon, Congo, Angola.
a!. Acraea servona servona, 2, forma rubra Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p 293, pl. 3, f. 9 (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 253, pl. 60d (1913).
Gaboon, Angola.
a®. Acraea servona servona forma reversa Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 293 (1912).
Congo.
b. Acraea servona limonata Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 293 (1912).
Fernando Po.
c. Acraea servona rhodina Rothschild & Jordan (circets yrhodina), Novit. Zool. Vol. 12, p. 184 (1905); EMringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 293, pl. 3, f. 4, O ‘t912).
= circeis var. subochreata Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 164 (t910); Deutsch Zentr.
Afr, Exped. p. 518, pl. 11, f. 8 (1911).
Beni, Uganda, Abyssinia.
d, Acraea servona tenebrosa Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 293 (1912).
German East Africa (Kwidgwi Island).
FAM. NYMPHALIDA® 51
e. Acraea servona orientis Aurivillius, Ent. Tidskr. p. 94 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 292,
pl. 3, £5, S (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 253, pl. 57¢ (1913).
German East Africa.
et. Acraea servona orientis forma depunctella Strand, Int. Ent. Zeit., Guben, Vol. 41, p.
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 292 (1912).
iS}
iS}
1 (1911);
German East Africa.
e°. Acraea servona orientis forma unipunctella Strand, Int. Ent. Zeit., Guben, Vol. 41. p. 221 (1911);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 293 (1912).
German East Africa.
«. Acraea servona orientis forma semipunctella Strand, Int. Ent. Zeit., Guben, Vol 41, p. 221 (1911);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 292 (1912).
German East Africa.
-*. Acraea servona orientis forma transienda Strand, Int. Ent. Zeit., Guben, Vol. 41, p. 221 (1911);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 292 (1912).
German East Africa.
t11. Acraea circeis Drury.
Acraea circeis Drury (Pa.), Ill. Exot. Ins. Vol. 3, p. 24, pl. 18, f. 5, 6 (1782); Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 5,
p. 13, pl. 81, f. 6, 7 (1792); Aurivillius (4.) Rhop. Aethiop. p, 114 (1898) (part.); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 298, pl. 13, f. 23 (g) (1912).
= mandane Fabricius, Ent. Syst. Vol. 3 (1), p. 183 (1793); Godart, Enc. Méthod. p. 239 (1819).
= opis Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 6, pl. 136, f. 1, 2 (1793).
Sierra Leone, Ashanti, Cape Coast Castle, Gaboon, North Angola.
112. Acraea oreas Sharpe.
a. Acraea oreas oreas Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 193, pl. 17, f. 5 (1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
p. 114 (1898); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 46 (1902); Neave. Novit. Zool. Vol. 12, p. 346 (1904);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 298, pl. 13, f. 25(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 251,
pl. 57¢ (1913).
Angola, Congo, Uganda, British East Africa, German East Africa. ;
a! Acraea oreas forma albimaculata Neave, Novit. Zool. Vol. 12, p. 329, 346(1904); Eltringham, Trans. Ent
Soc. Lond. p. 299 (1012).
Locality as a.
a*. Acraea oreas forma angolanus Lathy (A. angolanus), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 3, pl. 1,f 4, 5 (1906);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 299 (1912).
Angola.
a3, Acraea oreas, 9, aberr. radians Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 251 (1913).
= angolanus © ab. Lathy (/. c.)
113. Acraea semivitrea Aurivillius.
Acraea semivitrea Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 16, p. 111 (1895); Rhop. Aethiop. p. 114, pl. 1, f, 2 (1898) ;
Eltringham, Trans. Ent. Sec. Lond. p. 300, pl, 13, f. 26(g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 253,
pl. 574 (1913).
— pervia Sharpe, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 19, p. 581 (1897); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904).
Congo, Uganda, British East Africa.
114. Acraea igola Trimen.
a. Acraeaigolaigola Trimen S. Afr. Butl. Vol. 3, p. 379 (188y); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 21,
p. 12, pl. 4, f. 5 (1892); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 112 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p- 302, pl. 15, f. 6g) (1912).
— cerasa Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. p. 21, pl. 4, f. 2, non f. 1 (1892).
= obeira Trimen, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 23 (1894).
German East Africa, Rhodesia, Zululand, Natal.
52 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
a!. Acraea igola igola, 2, forma maculiventris Grose-Smith & Kirby (A. maculiventris), Rhop. Exot. Vol. 29,
p. 16, pl. 5, f. 4, 5 (1894); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 302 (1912).
= obeira 2, Trimen, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 172 (1891).
Locality as a.
115. Acraea aubyni Eltringham.
Acraea aubyni Eltringham, Trans. Ent. Soc, Lond. p. 304, pl. 5, f. 6, 5, pl. 15, f. 9 (g) (1912); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep. p. 257, pl. 60a (1913).
British East Africa.
116. Acraea orestia Hewitson.
a. Acraea orestia orestia Hewitson, Ent. Monthly Mag. Vol. 11, p. 131 (1874); Exot Butl. pl. 7, f. 47 (1875,;
Snellen, Tijdschr. v. Ent. Vol. 25, p. 217 (1882); Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 273 (1893); Rhop.
Aethiop. p. 112 (1898); Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 186 (1903); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p, 305, pl. 15, f. 10 (g) (as humilis) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 256, pl. 56g (1913).
= orestina Plétz, Stett. Ent. Zeit. Vol. 41, p. 190 (1880).
= iturina Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 346 (1904).
Nigeria, Fernando Po, Cameroon, Gaboon, Angola, Congo, Uganda, British East Africa.
a, Acraea orestia orestia forma transita Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 306 (1912).
= humilis , Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 7, p. 23. pl. 7, f. 1, 2 (1901).
Uganda, British East Africa.
a’, Acraea orestia orestia forma carpenteri Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 409 (1913).
= orestia forma humilis Eltringham, ibidem, p. 305 (1912) (part.).
Uganda, British East Africa.
‘a3. Acraea orestia orestia forma moliruensis, Strand, Arch. f. Naturg. Vol.79, Abt. A, Heft. 12, p. 102 (1013).
Cameroon,
117. Acraea cinerea Neave.
a. Acraea cinerea alberta Eltringham, Novit. Zool. Vol. 18, p. 151 (1911); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 307,
pl. 4, f. 1, S (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 256, pl. 60¢ (1913).
W. of L. Albert Edward.
b. Acraea cinerea cinerea Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 325, pl. 1, f. 16 (1904); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 307, pl. 15, f. 8 (g) (1912).
British East Africa.
118. Acraea quirinalis Grose-Smith.
Acraea quirinalis, Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 7, p. 544 (1900); Rhop. Exot. Vol. 7, p
f. 5 (1g01); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 305, pl. 15, f. 7g (1912).
Uganda, British East Africa, German East Africa.
. 24, pl. 7,
119. Acraea fornax Butler.
a. Acraea fornax fornax Butler, Ann, Mag. Nat. Hist.(5), Vol. 4, p. 230(1879); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lep.
Vol.1, p, 106, pl. 9a, f.10, 10a (1885-1887); Aurivillius, Rhop.Aethiop. p. 103 (1898); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 309, pl. 15, f. 11 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 266, pl. 55g (1913); Oberthur,
Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 156, 157, f. 15 (g); p. 158, f. 16 (g); pl. 334, f. 2502 © (1916).
= smithii Mabille, Ann. Soc. Ent. France (5), Vol. 9, p. 341 (1879).
Madagascar.
al. Acraea fornax fornax forma blachieri Oberthur. Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 156, pl. 334, figs. 2803,
2804 (1916).
120. Acraea strattipocles Oberthur.
a. Acraea strattipocles strattipocles Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 18, pl. 1, f. 9, pl. 3, f. 25 (1893);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 112 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p.311, pl. 15, f. 13(g) (1912)?
Aurivillius, in Seitz, Macr Lep. p.257, pl. 56 f (1913); Oberthur, Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 159,
162-163, figs. 17-19 (g), pl. 335, figs. 2805, 2808 (1916).
Madagascar.
FAM. NYMPHALIDA® 53
a’. Acraea strattipocles strattipocles forma cervina Oberthur, Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 161, pl. 335,
figs. 2806, 2809 (1916).
Antsianaka.
a2. Acraea strattipocies strattipocles forma albescens Oberthur, ibidem figs. 2807, 2810 (1916).
Antsianaka,
121. Acraea masamba \Vard.
a. Acraea masamba masamba Ward, Ent Monthly Mag.Vol. 9, p.3 (1872); Afr. Lep. p.10, pl. 7, £.3, 4 (1874)5
Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. p. 103, pl. 9, f. 9, 9 (1885-1887); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 112 (1898),
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 312, pl. 15, f. 4 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 257,
pl. 56g (1913); Oberthur, Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 164 (1916).
= rippeli Saalmiiller, Ber. Senckenb. Ges. Frankfurt, p. 80 (1878).
Madagascar.
a!. Acraea masamba masamba forma silia Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1, p. 105, pl. 9a, f. 3, 4
(1885-1887); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 312 (1912) (part.).
Madagascar.
a. Acraea masamba masamba, Q, forma boseae Saalmiiller, Ber. Senckenb. Ges. Frankfurt, p. 259 (1880) ;
Lep. Madag. Vol. 1, p. 76, pl. 1, f. 3 (1884): Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. p. 106 (1885-1887); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 312 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 257, pl. 56g (1913).
Madagascar.
a3. Acraea masamba masamba forma vulgaris Oberthur Saalmiller (masamba) Lep. Madag. p. 75,
pl. 3, f. 32 (1884); Eltringham (masamba, part.) Trans. Ent. Soc. Lond. p. 312 (1912); Oberthur, Etud.
de Lép. Comp. Vol. 11, p. 168, pl. 334, f. 2799, 2800 (1916).
Madagascar.
a. Acraea masamba masamba forma dehilis Oberthur. Mabille (masamba and masamb silia, part.)
Hist. Nat. Madag. Lép. p. 103, pl. ga, f. 2, 4 (1885-1887); Eltringham (masamba, part.) Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 312 (1912); Oberthur, Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 168 (1916).
Madagascar.
122. Acraea siliana Oberthur.
a. Acraea siliana siliana Oberthur, Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 168, f. 23. 24, 25, 26, pl. 333, f. 2792, 2793
1916).
= silia (part ) Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 312 (1912).
Madagascar.
[ Doubtfully separable from masamha. |
a\. Acraea siliana siliana forma concolor Oberthur, Etud. de Lép. Comp. Vol. 11, p. 161, 168, pl. 533, f. 2794
1916).
= silia (part.) Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 312 (1912).
Madagascar.
a2. Acraea siliana siliana forma antakara Oberthur, Etud. de Lép. Comp. Vol.11. p. 161, 169, pl. 333, f. 2795,
2796 (1916).
= silia (part.) Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 312 (1912).
123. Acraea sambavae WVard.
a. Acraea sambavae Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 10, p. 59 (1873); Mabille, Hist. Nat. Madag. Lép. Vol. 1,
p, 101, pl. 10, f. 7, 9 (1885-1887); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 112 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 314, pl. 15, f. 15 (g) (1912).
Madagascar.
124. Acraea safie [Fe'der.
a. Acraea safie safie Felder, Reise Novara. Lep. p. 370 (1867); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 114 (1898);
Rothschild & Jordan, Novit. Zool.Vol. 12, p. 183(1905); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. pl. 15, f. 1(g)
(1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 255, pl. 57b (1913).
Abyssinia.
54 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
6. Acraea safie safie forma antinorii Oberthur (A. antinorit), Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 15, p. 157,
pl. 1, f. 3 (1880); ibidem, Vol. 18, p. 719 (1883); Aurivillius, Rhop. Aethiop. (safie var. antinorti), p. 114
(1898); Pagenstecher, Jahrb. Nassau Ver. Naturk. Vol. 55, p. 136 (1902); Rothschild & Jordan, Novit,
Zool. Vol. 12, p. 183 (1905); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 316 (1912).
Abyssinia.
125. Acraea baxteri Sharpe.
a. Acraea baxteri baxteri Sharpe, The Entomologist, p. 40 (1902); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 267,
pl. 5,f. 10, O, pl. 15, f. 5 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 253, pl. 54a (1913).
al. Acraea baxteri baxteri forma fulleborni Thurau, Berl. Ent, Zeitschr. p. 133, pl. 2, f.7 (1903); Eltrin-
gham, Trans. Ent. Soc, Lond. p. 267 (1912).
a, Acraea baxteri baxteri forma subsquamia Thurau, Berl. Ent. Zeitschr. p. 135 (1903); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 267 (1912)-
British East Africa, German East Africa, Nyassaland.
126. Acraea amicitiae Heron.
a. Acraea amicitiae amicitiae Heron, Trans. Zool. Soc. Lond. Vol. 19, p. 148, pl. 5, f. 11 (1909); Griinberg,
Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 515 (1911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 317, pl. 15, f. 12 (g) (1912);
Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 259, pl. 59f (1913).
Mt. Ruwenzori, N. W. Tanganyika.
= polychroma Rebel, Ann. Naturh. Mus. Wien, p. 410, pl. 14, f. 3 (1910).
127. Acraea ansorgei Grose-Smith.
Acraea ansorgei Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 5, p. 351 (1898); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 117
(1898); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 6. p. 21, pl.6 f. 9, 10 (1901); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 318, pl. 16, f. 5(g) (1912).
British East Africa,
128. Acraea conjuncta Grose-Smith.
a, Acraea conjuncta conjuncta Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 5, p. 351 (1898); Aurivillius, Rhop. Aethiop
p- 117 (1898); Grose Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 6, p. 22, pl. 6, f. 11, 12 (1901); Eltringham, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 310, pl. 14, f. 13(g) (1912).
British East Africa.
a. Acraea conjuncta conjuncta forma interrupta Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond, p. 319 (1912).
Locality as a.
a. Acraea conjuncta conjuncta, o, forma silacea Eltringham, ibidem, p. 319 (1912).
Locality as a.
a3. Acraea conjuncta conjuncta, o, forma mutata Eltringham, ibidem, p. 319 (1912).
Locality as a.
a4, Acraea conjuncta conjuncta, o, forma pica Eltringham, ibidem, p. 319 (1912).
Locality as a,
a’, Acraea conjuncta conjuncta, o, forma lutealba, Eltringham, ibidem, p. 319 (1912). — Pl. |, Fig. 9.
Locality as a.
a’. Acraea conjuncta conjuncta, 9, forma suffusa Eltringham, ibidem, p. 319 (1912).
Locality as a.
129. Acraea disjuncta Grose-Smith.
Acraea disjuncta Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 5, p. 351 (1898) ; Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 117 (1898);
Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 6, p. 20, pl. 6, f. 7,8 (1901); Heron, Trans. Zool. Soc. Lond.
Vol. 19, p. 148 (1909) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 321, pl. 14, f. 12 (g) (1912); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep. p. 249, pl. 60¢ (1913).
= Planema nandensis Sharpe, Ann. Mag. Nat. Hist. Vol. 3, p. 244 (1899).
East Congo, British East Africa.
FAM. NYMPHALIDE 55
130. Acraea actinotina Lathy, Neave, Proc. Ent. Soc. Lond. p. 99 (1915) (as actinota).
= Telipna actinotina Lathy, Trans. Ent Soc, Lond. p. 194, pl. 8, f. 2 (1903).
131. Acraea alciope Hewitson.
a. Acraea alciope alciope Hewitson, Exot. Butt. pl. 1, f. 4, 9 non ¢ (1852); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38,
p. 196 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 116 (1898); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 44, pl. 3, f. 23
(1910); Poulton, Bedrock, p. 59 etc. f. 3, 4, 8, 9, 10 (1912); Eltringham (metam), Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 322, pl. 6, f. ro (larva), pl. 14, f. 11 (g) (1912) ; Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 248, pl 57 (1913).
Q = cydonia Ward, Ent. Monthly Mag. Vol. 10, p. 59 (1873); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 196
(1893); Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 278 (1893); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 44, pl. 3, f. 16
(1910).
Ashanti to Uganda.
al. Acraea alciope alciope, 0, forma macarina Butler (4. macayina), Proc. Zool. Soc. Lond. p. 221, pl. 17, f. 6
(1868); Hewitson, Exot. Butt. pl. 1, f£.5(1852); Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 278, f. 6 (1893); Rhop.
Aethiop. p. 116 (1898); Aurivillius (metam) Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 278, pl. 5, f. 3 (1883) ; Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p 322 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr Lep. p. 248, pl. 57e (1013).
Ashanti to Beni.
a2. Acraea alciope alciope, 2, forma cretacea Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 323 (1912).
= alciope, 2, Poulton, Bedrock, Vol. 1, p. 63, f, 11 (1912).
Lagos.
a3. Acraea alciope alciope, 2, forma fumida Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 323 (1912).
Locality as az.
at, Acraeaalciope alciope, 2, forma aurivillii Staudinger, (A, aurivillii), Iris, Vol. 9, p. 209, pl. 2, f. 2 (1896);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 117 (1898); Eltringham, Proc. Ent. Soc. Lond. p. 67 (1909): Afr. Mim.
Butt. p. 45, pl. 8, f. 4 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 323(1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 248,
pl. 57e (1913).
= Planemaailicia, 2, Grose-Smith, Novit. Zool. Vol. 7, p. 546 (1900) ; Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot.
Vol. 8, p. 30, pl. 8, f. rz (rg0r).
= alciope, 2, Poulton, Bedrock, p. 62, f. 7, 14 (1912).
Cameroon to Uganda.
@. Acraea alciope alciope, 2, forma latifasciata Griinberg, Sitzb. Ges. Nat. Freunde, Berlin, p. 164 (1910);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 323 (1912). :
a°, Acraea alciope alciope, 2, forma tella Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 323 (note) (1912).
= Planema alicia, ¢, Grose-Smith, Novit. Zool. p. 546 (1900); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 8,
p- 30, pl. 8, f, 9, 10 (1901).
= alciope, 2, Poulton, Bedrock, p. 62, f. 12 (1912).
Uganda.
a’, Acraea alciope alciope, 2, forma bakossua Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 77,1, 4, p. 114 (1912).
Bakossu.
* a8, Acraea alciope alciope forma edea Strand Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12, p. 106 (1913).
Cameroon.
*a°, Acraea alciope alciope forma lomana Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12, p. 106 (1913).
Cameroon.
5. Acraea alciope schecana Rothschild & Jordan, Novit. Zool. Vol. 12, p. 184 (1905); Eltringham, Afr. Mim.
Butt. p. 44 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 323 (1912).
Abyssinia.
132. Acraea jodutta Fabricius.
a, Acraea jodutta jodutta Fabricius (Pap.), Syst. Ent. (3), 1, p, 175 (1793); Butler (A.), Cat. Lep. descr. Fabr.
p. 130 (1869); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 116 (1898); Ann. Mus, Stor. Nat. Genova (3), Vol. 4, p. 20
(513) (1910); Eltringham, Afr. Mim, Butt. p. 80 (1910); Griinberg, Sitzb. Ges. Nat. Freunde, Berlin,
p- 150 (1910); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 327, pl. 14, f. 10 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz
Macr. Lep. p. 249, pl. 57e (1913). ;
¢ — flava Dewitz, Nov. Acta Acad. Nat. Cur. Halle (41), Vol. 2,no. 2, p. 19. pl. 1, f. 10 (1879).
= gea Moschler, Abhandl. Senckenb. Ges. Frankfurt, Vol. 15, p. 55 (1887).
Senega to Uganda, Nyassaland.
56 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
al. Acraea jodutta jodutta, °, forma carmentis Doubleday, (A. cavmentis), Gen. diurn Lep. p. 140, pl. 19,
f. 1 (1848); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 327 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 249,
pl. 37e (1913).
= Planema dorotheae, 2, Sharpe, The Entomologist, p. 135 (1902).
Ibidem,
a2. Acraea jodutta jodutta, °, forma dorotheae Sharpe (Plazema dorotheae), «3 », The Entomologist, p.135 (1902);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 327 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 249 pl. 57d as pseudo-
brotea and metaprotea (1913).
= jodutta, ©, var. Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 81, pl. 8, f.9 (1910).
Uganda, British East Africa.
a3. Acraea jodutta jodutta, 2, forma interjecta Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 327 (1912).
British East Africa.
a4, Acraea jodutta jodutta, 2, forma subfulva Eltringham, ibidem, p. 327 (1912).
Sierra Leone.
a. Acraea jodutta jodutta, °, forma castanea Eltringham, ibidem, p. 328, pl. 5, f. 1 (1912); Aurivillius, in Seitz,
Macy. Lep. p. 249, pl. 59a (1913).
Lagos.
a®. Acraea jodutta jodutta, 2, forma inaureata, Eltringham, ibidem, p. 327, pl. 5, f. 8 (1912); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep, p, 249, pl. 50d (1613).
Nyassaland.
a’. Acraea jodutta jodutta forma joduttana Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12, p. 105 (1913).
Cameroon.
6. Acraea jodutta aethiops Rothschild & Jordan, Novit. Zool. Vol 12, p. 183 (1905); Eltringham, Trans, Ent.
Soc. Lond. p. 327 (1912).
Abyssinia.
133. Acraea esebria Hewitson.
a. Acraea esebria esebria Hewitson, Exot. Butt. pl. 2, f. 11 (1861); Weale, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 271 (1877);
Moéschler, Verh. Zool.-bot. Ges. Wien, Vol. 33, p. 283 (1883); Trimen /metam.) S. Afr. Butt. Vol. 1; p. 177,
pl. 1, f. 2, 2a (1887); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 115 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 331,
pl. 14, f..9(g) (1912).
= protea, var. B., Trimen, Rhop. Afr. austral. p. 111, pl. 3, f. 2, (1866).
British East Africa, German East Africa, Katanga, Mashonaland, Zululand, Natal, Cape Colony.
al. Acraea esebria esebria forma protea Trimen, Rhop. Afr. Austral. p. 110 (1866); Aurivillius, Rhop. Aethiop.
Pp. 115 (1848); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 331 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 240,
pl. 57¢ (1913).
= esebria, 2, Hewitson, Exot. Butt. pl. 2, t. 12 (1861); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 85, pl. 33 (1885).
= esebria, var. A., Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 178 (1887).
= arctifascia Butler (P/anema), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 427 (1874).
Angola to British East Africa and the Cape.
a*, Acraea esebria esebria forma pseudoprotea Butler (Planema), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 428 (1874);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 115 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 331 (1912).
Angola.
a3. Acraea esebria esebria, 0, forma amphiprotea Butler (Planema), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 428 (1874);
Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 115 (1898) ; Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 331 (1912).
Angola.
at, Acraea esebria esebria, ©, forma metaprotea Butler (Planema), Cist. Ent Vol. 1, p. 211 (1874); Auri-
villius, Rhop. Aethiop. p. 116 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 331 (1912).
Angola.
a>. Acraea esebria esebria forma jacksoni Sharpe (Planema), Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 5, p. 335 (1890) ;
Waterhouse, Aid Class. Ins. pl. 189, f. 1 (1890); Rogenhofer, in Baumann, Usambara, p. 326 (1891); Auri-
villius, Rhop. Aethiop. p. 116 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 332 (1912); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep. p. 248, pl. 57d (1913).
British East Africa, German East Africa, Mashonaland.
PAM. NYMPHALTD A 57
a5, Acraea esebria esebria forma monteironis Butler (Planema), Cist. Ent. Vol. 1, p. 211 (1874); Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 427 (1874); Grtinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 150 (1910); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 332 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 249, pl. 57d (1913.
Angola, Uganda, British East Africa, Mashonaland.
a’, Acraea esebria esebria, 0, forma nubilata Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 332 (1912).
Zululand.
aS’. Acraea esebria esebria forma ertli Aurivillius, (4. ertlt), Ent. Tidskr. p. 04, f. 34 (1904); Eltringham,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 332 (1912).
German East Africa.
*a9. Acraea esebria esebria forma kibruezia Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 6, p. 112 (1913).
Kibwezi.
6. Acraea esebria masaris Oberthur (4. masavis), Etud, Ent. Vol. 17, p. 27, pl. 1, f. 3,12, pl. 2, f. 18, pl. 3,
f. 30 (1893}; Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 116 (1898); Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 519
(r911); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 332 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 249,
pl. 57¢ (1913).
Comoro Island, Mt. Ruwenzori.
134. Acraea lycoa Godart.
a. Acraea lycoa lycoa Godart, Enc. Méthod. Vol. 9, p. 239 (1819); Staudinger, Exot. Schmett. Vol. 1, p. 85
(1885); Dewitz, Ent. Nachr. p. ro4 (1889); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 115 (1898); Poulton, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 305 (1906); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 47 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 12, pl. 1,
f. 1, 2, pl. 2, f. 1, 4 (1911); ibidem, p. 336 (metam), pl. 6, f. 8(larva), pl. 14, f. 6(g) (1912).
Sierra Leone to Nigeria.
6. Acraea lycoa media Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 12 (1911) ; ibidem, p. 336 (1912); Aurivillius, in
Seitz, Macr. Lep. p. 250, pl. 57¢ (as lycoa) (1913).
= lycoa Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 277, ibidem (metam), p. 278, pl. 5, f. 2, 2a, 2b (1893).
? =lycoa Griinberg, Deutsch Zentr. Afr. Exped. p. 519 (1911).
Fernando Po to Toro.
c. Acraea lycoa bukoba Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 12, pl. 1, f. 3, 4 (1911); ibidem, p. 336 (1912).
? = lycoa Griinberg, Sitzb. Ges. Naturf. Freunde, Berlin, p. 150 (1910) (Sesse 1).
Urundi Country.
d. Acarea lycoa entebbia Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 12, pl. 1, f. 5 (1911); ibidem, p. 336 (1912).
Uganda.
e. Acraea lycoa tirika Eltringham, ibidem, p. 13, pl. 1, f. 6 (1911) ; ibidem, p. 336 (1912).
British East Africa.
f, Acraea lycoa fallax Rogenhofer (Planema fallax), Ann. Naturh. Hist. Mus. Wien, Vol. 6, p. 459, pl. 15, f. 6(1891);
Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 113 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 115 (1898); Poulton, Trans.
Ent. Soc. Lond, p. 305, pl. 21, f. 1a, 2a (1906); Heron, Trans. Zool. Soc. Lond. Vol. 19, p. 147 (1909) ;
Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 47, pl. 3, f. 24, 25 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 13. pl. 1, f. 7 (1911);
ibidem, p. 337 (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep. p. 250, pl. 57¢ (1913).
= kilimandjara Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 26, pl. 2, f. 17 (1893); Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 113
(1896); Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 305 (1906).
Mt. Kilimandjaro.
g. Acraealycoa kenia [ltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 13, pl.2, f. 7(1911) ; ibidem, p. 337 (1912).
British East Africa (Mt. Kenia).
h. Acraealycoa aequalis Rothschild & Jordan, Novit. Zool. p. 184 (1905); Eltrinyham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 13, pl.1, f. 8,9 (1911); ibidem, p. 337 (1912).
Abyssinia.
135. Acraea johnstoni Godman.
a. Acraea johnstoni johnstoni Godman, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 537 (1885); Holland, Ann. Mag. Nat. Hist.
Pp. 248 (1893); Butler, Proc. Zool Soc. Lond. p. 113 (1896); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 114 (1898);
Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 300 (1906); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p, 47 (1910); Eltringham
58 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
(metam.), Trans. Ent. Soc, Lond. p. 13, pl. 1, f. 12, 2, pl. 2, f. 2(g), pl. 2, f. 6 (larva) (1911); ibidem, p. 339,
pl. 14, f. 5 (g) (1912); Aurivillius, in Seitz, Macr. Lep p. 250, pl. 57d (1913).
= Planema telekiana Rogenhofer, Ann, Naturh. Mus. Wien, p. 459, pl. 15, f. 4 (1891).
= Acraea protenia semifulvescens Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p.26, pl. 2, f. 21 (1893); Butler, Proc.
Zool. Soc. Lond. p. 113 (1896); Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 302, pl. 22, f. 2 a, pl. 21, f. 3a (1906);
Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 47, pl. 8, f. 13 (1910).
British East Africa, German East Africa.
al. Acraea johnstoni johnstoni forma confusa Rogenhofer (Planema confusa), in Baumann, Usambara, Suppl.
p-326(1891); Ann. Naturh. Mus. Wien, p. 459, pl. 15, f. 5 (1891); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 115(1898);
Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 14, pl. 1, f. 13, 15 (1911) ; ibidem, p. 340 (1912).
== johnstoni, 2, Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. p. g1 (1888).
= proteina Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 26. pl. 2, f. 14 (1893); Poulton, Trans. Ent. Soc, Lend. pl. 22,
f. ra, 1b (1906).
Uganda, British East Africa; German East Africa, Rhodesia, Nyassaland.
a2. Acraea johnstoni johnstoni forma flavescens Oberthur (protenia flavescens), Etud. Ent. Vol. 17, p. 26,
pl. 1, f. 4 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 115 (1898); Eltringham (forma coz/fusa part.), Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 14 (1911); ibidem, p. 340 (1912).
Locality as al.
a3, Acraea johnstoni johnstoni forma semialbescens Oberthur (protenia semialbescens), Etud, Ent. Vol. 17,
p. 26, pl. 3, f. 28 (1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 115 (1898); Eltringham (f. confusa part), Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 14 (1911) ; ibidem, p. 340 (1912).
German East Africa, Nyassaland.
a4, Acraea johnstoni johnstoni forma fulvescens Oberthur (frofenia fulvescens), Etud, Ent. p. 26, pl. 2, f. 21
(1893); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 114 (1898); Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 304, pl. 21, f. 4a
(1906); Eltringham. Afr. Mim. Butt. p. 47, pl. 3, f. 26 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 14, pl. 1, f. 11
(1911); ibidem, p. 340 (1912).
British East Africa, German East Africa.
222 (1894); Aurivillius,
a, Acraea johnstoni johnstoni forma octobalia Karsch, Ent. Nachr. Vol. 20, p.
1); ibidem, p. 340 (1912).
Rhop. Aethiop. p. 114 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 15 (191
German East Africa.
>. Acraea johnstoni butleri Aurivillius (Jycoa var. butler’), Rhop. Aethiop. p. 115 (1898); Eltringham, Trans
Ent. Soc, Lond. p. 341 (1912).
= lycoa 2 var. Butler, Proc. Zool. Soc Lond. p. 731 (1895).
= toruna Grose-Smith. Novit. Zool. Vol. 7, p. 546 (1900); Rhop. Exot Vol. 8, p. 27, pl. 8, f. 1 (1901):
Poulton, Trans. Ent. Soc, Lond. p. 303, pl. 22, f. 3a (1906); Heron, Trans, Zool. Soc. Lond. Vol. 19,
p- 148 (1909); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 47, pl. 3, f. 28 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p.15, pl. 1,
f. 10 (1911); ibidem, p. 341 (1912).
Uganda, German East Africa.
136. Acraea niobe Sharpe.
Acraea niobe Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 554 (1893); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 5, p. 18,
pl.5,f.10 (1894); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p.g2 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 344(1912).
Sao Thome.
137. Acraea insularis Sharpe.
Acraea insularis Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 555 (1893); Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 5,
p. 16, pl. 5, f. 6, 7 (1894); Aurivillius, Rhop. Aethiop. p. 112 (1898); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 345 (1912).
Sao Thome.
*138. Acraea silvicola Richelmann.
Acraea silvicola Richelmann, Int. Ent. Zeit. Guben, Vol. 7, p. 106, pl. 3, fig. 3a (1913).
Usambara.
139. Acraea andromache Fabricius.
a. Acraea endromache andromache Fabricius (Pap.) Syst. Ent. p. 466 (1775); Schmeltz, Verh. Zool.-bot.
Ges. Wien, p. 593 (1866); Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (4), Vol. 5, p. 361 (1870); Schmeltz, Verh. Ver
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Naturk. Hamburg, Vol. 2, p. 186 (1876); in Journ. Mus. Godefroy, Vol. 12, p. 174 (1877); Staudinger,
Exot. Schmett. p. 85, pl. 33 (1885); Olliff (metam), Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 1, p. 359 (1888); Mathew
(metam), Trans. Ent. Soc. Lond. p. 143, pl. 6, f. 14, 144 (1888); Fruhstorfer, Stett. Ent. Zeit. (68), Vol. 1,
p- 21 (1907); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 346 (1912).
= entoria Godart, Enc. Méthod. Vol. 9, p. 231 (1819).
= andromache forma indica Rober, Iris, Vol. 2, p. 22 (1885); Fruhstorfer, Stett. Ent. Zeit. (68), Vol. 1,
p- 21 (1907).
= andromacha Fruhstorfer, in Seitz, Macr. Lep., Vol. 9, p. 742 (1914).
North Australia, Flores Island, Semao, Loyalty Island, Espiritu Santo, New Caledonia, Fiji, Mango,
Samoa, Sumba, Letti, Toekan, Sermatta, Moa, Kabia, New Hebrides, Fergusson Island.
a', Acraea andromache andromache forma oenone Kirby, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 4, p. 163 (1889);
Allen’s Natur. Libr., Butt. Vol. 1, p. 36, pl. 37, f. 3 (1894); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 347
(1912).
East Island, St Aignan, Mekeo, British New Guinea.
b. Acraeaandromache sanderi Rothschild, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol, 12, p. 455 (1893); Fruhstorfer,
Stett. Ent. Zeit. (68), Vol. 1, p. 21 (1907); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 347 (1912).
—=agema Fruhstorfer, Stett. Ent. Zeit. (68), Vol. 1, p. 21 (1907); idem, in Seitz, Macr. Lep., Vol. 9, p. 742,
pl. 1386 (1914).
New Guinea.
140. Acraea moluccana Felder.
a. Acraea moluccana moluccana Felder, Sitz. Akad. Wiss. Wien, Vol. 40, p. 449 (1860); Fruhstorfer, Stett.
Ent. Zeit. (68), Vol 1, p. 20(1907); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 347 (1912); Fruhstorfer, in Seitz,
Macr. Lep., Vol. 9g, p. 743 (1914).
Amboina.
= nebulosa Hewitson, Exot. Butt. pl. 2, f. 13 (1861).
Ceram.
= fumigata Honrath, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 30, p.130, pl. 4, f. 3 (1886); Hagen, Jabrb. Nassau Ver. Naturk.
Wiesbaden, p. 82 (1897); Ribbe, Iris, p. 109 (1898); Fruhstorfer, Stett. Ent. Zeit. (68), Vol. 1, p. 20 (1907).
New Britain.
= pollonia Godman & Salvin, Ann. Mag. Nat. Hist. p. 110 (£888); Grose-Smith, Rhop. Exot. Vol. 1, f. 1, 2
(1889); Fruhstorfer, Stett. Ent. Zeit. (68), Vol. 1, p. 20 (1907).
Guadalcanar, Shortland Island.
= moluccana pella Fruhstorfer, Stett. Ent. Zeit. (68), Vol. 1, p. 19 (1907).
Woodlark Island.
6. Acraea moluccana meyeri Kirsch, Mitt. Zool. Mus. Dresden, p. 123, pl. 6, f. 2 (1877); Fruhstorfer, Stett.
Ent. Zeit. (68), Vol. 1, p. 20 (1907); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 348 (1912).
New Guinea.
c. Acraea moluccana dohertyi Holland, Proc. Boston Soc. Nat. Hist. Vol. 25, p. 61, pl. 5, f 7 (1891); Rothschild,
Iris, Vol. 5, p. 435 (1892); Fruhstorfer, Stett. Ent. Zeit. (68), Vol. 1, p. 19/1907); Eltringham, Trans. Ent.
Soc. Lond. p. 348 (1912).
Celebes.
d. Acraea moluccana parce Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 193, pl. 1, f. 8 (1896); Fruhstorfer, Stett. Ent. Zeit.
Vol. 1, p. 19 (1907); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 348 (1912).
Xulla Island.
z. Acraea mojuccana buruensis Rothschild, Novit. Zool. Vol. 6, p. 63 (1899); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 348 (1912).
Buru.
141. Acraea violae Fabricius.
Acraea violae Fabricius (Pap.) Syst. Ent. p. 460(1775); Horsfield (metam.) Cat. Lep. East. Ind. Comp. pl. 8,
f.2, 24 (1829); Doubleday, Gen. diurn. Lep. p. 142(1848); Moore, Cat. Lep. Mus. East. Ind, Comp. (metam.)
p. 135, pl. 5. f. 1, 14 (1857); Chaumette, Ent. Monthly Mag. p. 37 (1865); Butler, Cat. Fabr. Lep. p. 131
1869); Moore, Lep. Ceylon (metam.), Vol.1, p. 66. pl. 33, f. 1, ra, 1b (1881); Marshall & Nicéville, Butt.
India, p. 320, f. S (1883); Nicéville, Journ. Asiat. Soc. Bengal, p. 43 (1885); Swinhoe, Proc. Zool. Soc.
60
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Lond, p. 127 (1885); ibidem, p. 424 (1886); Aitken, Journ. Bombay Nat. Hist. Soc, p. 129 (1886); Hampson,
Journ. Asiat. Soc. Bengal, p. 352 (1888); Davidson & Aitken, Journ. Bombay Nat. Hist. Soc. Vol. 5,
p- 268 (1890); Fergusson, Journ. Asiat. Soc. Bengal, p. 7 (1891); Swinhoe, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 276
(1893); Nicéville, Sikkim Gazetteer, p. 131 (1894); Davidson & Aitken, Journ. Bombay Nat. Hist. Soc.
p. 246 (1896); Moore, Lep. Indica (metam,) Vol. 5, p. 36, pl. 388, f. 1-1 (1901-1903); Suffert (v/ola), Iris,
p. 34 (1904); Bingham, Fauna Brit. India, Vol. 1, p. 471, f. 85 (1905); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 348 (1912); Fruhstorfer, in Seitz, Macr. Lep. Vol.9, p. 742 (1914).
= cepheus Sulzer, Gesch. Ins. pl. 15, f.2, p. 143 (1776); Goetze, Ent. Beytr. (3), Vol, 1, p. 97 (1779).
= cephea Cramer, Pap. Exot. Vol. 4, pl. 298, f. D. E. (1782); Htibner, Verz. bek. Schmett. p. 27 (1816).
India, Ceylon.
142. Acraea vesta Fabricius.
a. Acraea vesta vesta Fabricius (Pap.) Mant. Ins. Vol. 2, p. 14 (1787); Donovan, Ins. China, pl. 30, f. 1 (1799);
Godart, Enc. Méthod. Vol. 9, p. 233 (1819); Doubleday, Gen. diurn. Lep. (Pareba) p. 142 (1846-1850);
Butler, Cat. Fabr. Lep. p. 132 (1869); Graham Young, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 243 (1882); Marshall &
Nicéville, Butt. Ind. Vol. 1, p. 318 (1883); Staudinger, Exot. Schmett. p. 85, pl. 33 (1885); Doherty
Journ. Asiat. Soc. Bengal, p. 114 (1886); Klwes, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 334 (1888); Manders, Trans.
Ent. Soc. Lond. p. 520 (1890); Leech. Butt. China, Vot. 1, p. 14 (1892); Nicéville, Sikkim Gazetteer,
p. 131 (1894); Watson, Journ. Bombay Nat. Hist. Soc. p. 652 (1897); Leech, Trans. Ent. Soc. Lond.
p. 104 (1899) ; Joannis, Bull. Scient. France et Belg. p. 325 (1901); Moore, Lep. Indica, Vol. 5 (metam.),
p. 31, pl. 387, f. 1a, 1f (1901); Bingham, Fauna Brit. Ind. Butt. Vol. 1, p. 469, f. 84 (1905); Fruhstorfer,
Wien. Ent. Zeit. p. 308 (1906); Eltringham, Trans. Ent. Soc’ Lond. p. 349 (1912); Fruhstorfer, in Seitz,
Macr. Lep. Vol. 9, p. 741 (1914).
terpsichore, Cramer (ec Linneus) Pap. Exot. Vol. 4, pl. 298, f. A-C (1782).
issoria Hibner, Verz. bek. Schmett. p. 27 (1816).
anomala Kollar, in Hiigel’s Kashmir, Vol. 4 (2), p; 425, pl, 3, f. 2. 4 (1848); Staudinger, Exot. Schmett.
p. 85 (1885).
sordice Fruhstorfer, in Seitz, Macr. Lep. Vol. 9, p. 741 (1914).
North India, Assam, Burmah, Westand South China.
. Acraea vesta forma vestalina Fruhstorfer, Wien. Ent. Zeit. p. 308 (1906); Eltringham, Trans. Ent. Soc.
p. 350 (1912).
South Annam.,
>. Acraea vesta vestita Nicéville, journ. Asiat. Soc. Bengal. Vol. 64, p. 397 (1895); Moore, Lep. Indica, Vol. 5,
p- 35 (1901); Fruhstorfer, Wien. Ent. Zeit. p. 309 (1906); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond.p. 350(1912).
= vesSta Snellen van Vollenhoven, Midden Sumatra, p. 13, pl. 2, f. 3-5 (1892).
North East Sumatra.
6\. Acraea vesta vestita forma alticola Fruhstorfer, Wien. Ent. Zeit. p. 309 (1906); Eltringham, ibidem, p. 340
(1912).
West Sumatra.
c. Acraea vesta vestoides Moore (Paveba) Lep. Indica, Vol. 5, p. 35 (190r).; Fruhstorfer, Wien. Ent. Zeit.
p- 308, 309 (1906); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 350 (1912).
== vesta Horsfeld, Cat. Lep. Mus. East Ind. Comp. pl. 3, f. 21 (larva) (1829).
West Java.
d. Acraea vesta formosina Fruhstorfer, in Seitz, Macr. Lep. Vol. 9, p. 741 (1914).
Formosa.
e. Acraea vesta narona Fruhstorfer, ibidem.
East Java.
el. Acraea vesta narona forma arsa Fruhstorfer, ibidem.
East Java.
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3. GENUS PLANEMA DOUBLEDAY
Papilio Heliconius Cramer, Pap. Exot. Vol. 3, p. 64 (1779) (partim).
Papilio Heliconius Fabricius, Spec. Ins. Vol. 2, p. 32 (1781) (partim).
Actinote Hiibner, Verz. bek. Schmett. p. 26 (1816-1817) (partim).
Acraea Godart, Enc. Méth. Vol. g, p. 231 (1819) (partim).
Acraea Sect. Planema Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1. p. 140 (1848) (partim).
Acraea Lucas, in Chenu, Encycl. Hist. Nat. Pap. Vol. 1, p. 80 (1851-1853).
Acraea Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 130 (1871) (partim).
Acraea Staudinger, Exot. Tagf p. 81 (1885) (partim).
Acraea 3. Planema Schatz. Fam. Gatt. Tagf. p. 103 (1887).
Planema Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 175 (1887) (partim).
Planema Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 279 (1893).
Plianema Reuter, Acta Soc. Fauna Fenn. Vol. 22 (1), p. 46 (1896).
Planema Aurivillius, Svenska Vet.-Akad. Handl. Vol. 31, No. 5 (5), p. 1£7 (1899).
Planema Eltringham, Trans Ent. Soc. Lond. p. 4 (1912).
Planema Jordan, in Wagner. Lep. Cat. Pt. 11, p. 50 (1973).
Planema Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 239 (1913).
Genotype. — P. epaca Cramer.
Description. — Imago : The palpus is black, not swollen, and bears a stripe of dense white
scaling on the side. The first subcostal branch of the forewing originates beyond the apex of the cell or
more rarely from the apex. The cell of the hindwing is always small, being much less than half as long
as the wing; the upper submedian (1c) not preserved as a vein and not bearing bristles.
Early Stages. — The spines of the pupa and larva much longer than in Acraea and Actinote,
those of the pupa curved at the apex; the head of the pupa has the angles produced.
Systematics. — The « section » Planema of Doubleday was an unnatural division of Acraea,
including heterogeneous species. Schatz mentioned « euryfa Cramer», and « gea Fabricius » as typical.
As Cramer figured two species as euvita (not euryta), and as at the time wen Schatz wrote the Famulien
und Gattungen dey Tagfalter usually several species were united as varieties of one species euryla or eurita,
it is hardly possible to find out which particular species Schatz considered to be « euryta Cramer », the
figure of the neuration given by Schatz not being of any great help. The second species mentioned as
typical by Schatz is fixed by Schatz’s, reference to Staudinger’s figure in Evxotische Tagfalter. We
therefore take this species as the type of the genus. Planema was first properly defined by Aurivillius
in 1893, without fixation of a type.
The genitalia of the of are different in every species, the differences being very marked in some
species, less so in others.
Distribution. — The genus is confined to Africa. Most of the species occur in the forest region
of West and Central Africa, one extending to the Cape province, and also one only being known from
Abyssinia. In the whole of the large open tracts of British and German East Africa, exclusive of the
most northern and western districts, but inclusive of the Kilimandjaro and Kenia, four species occur,
whereas about twenty are known from the forest region extending from the Cameroons to Northern
Angola and eastward to Unyoro.
1. Planema epaea Cramer, Pap. Exot. Vol. 3, p. 64, t. 230. f. B. C. (£779) (Papilio Tropical Africa.
Heliconuis).
a, Planema epaea insularis Aurivillius, Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 4, p. 518 (1910 (Planema epaea var.).
62
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Planema epaea subsp. tnsularis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 52 (1913).
Fernando Po.
Planema epaea insulayis Aurivillius, in Seitz, Grosschmett. Vol. 13, p. 245 (1913).
>. Planema epaea epaea Cramer, Pap. Exot. Vol. 3, p. 64, t. 230, f. B. C. (1779).
Papilio Heltconius epea (!) Cramer, ibidem, Index (1779).
Papilio Heliconius epaea Goeze, Ent. Beytr. Vol. 3, Pt. 2, p. 8 (1780).
Papilio Heliconius gea Fabricius, Spec. Ins. Vol. 2, p. 32, no. 136 (1881); idem, Mant. Ins. Vol. 2, p. 16, no. 158
(1787); Gmelin, Syst. Nat. Vol 15, p. 2252, no. 366 (1790).
Papilio Heliconius epaea Herbst, Naturs. Schm. Vol. 5, p. 14, no. 5, t. 81, f. 8, 9 (1792).
Papilio Heliconius gea Fabricius, Ent. Syst. Vol. 3, Pt.1, p. 175, no. 534 (1793).
Actinote epaea Hiibner, Verz. bek. Schmett. p. 27, no. 210 (1816-1817).
Acraea gea Godart, Enc. Méth. Vol. 9, p. 238, no. 26 (1819).
Acraea (sect. Actinote) gea Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol.1, p. 140, no. 16 (1848).
2 Acraea (sect. Actinote) timandra Doubleday, ibidem, Vol. 1, p. 140, no. 16 (1848).
Actinote gea Butler, Cat. diurn. Lep. descr. Fabr. p. 129,no. 1 (1869).
2 Actinote timandva Butler, ibidem, sub p. 129, no. 1 {1869).
Acraea gea Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 133, no. 36 (1871) (partim.); Mabille, Bull. Soc. Zool. Fr. Vol. 1, p. 202
(1876); Dewitz, Nova Acta Acad. Nat. Cur. Halle, Vol. 41 (2,2), p. 6 (1879).
Acraea epaea Plotz, Stett. Ent. Zeit. Vol. 41, p. 190, no. 29 (1880).
Acraea gea Staudinger, Exot. Tagf. Vol. 1. p. 85, t. 33, OQ (1885); Mabille, Hist. Nat. Madag., Lép. p. 116,
no. 20, t. 12, f. 6-7 (1886-1887) ; Fromholz, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 31, p. 90 (1887); Dewitz, Ent. Nachr.
Vol. 15, p. 104 (1889); Biittikofer, Liberia, Vol. 2, p. 482 (1890).
Acraea epaea Moschler, Abh. Senck. Ges. Frankfurt, Vol. 15, p. 55, no. 43 (1887); Aurivillius, Ent. Tidskr, Vol.12,
p. 202, no 45 (1891).
Planema gea Sharpe, Iris, Vol. 4, p. 55, no. 20 (1891).
Acraea gea Haase, Unters. Mim. t. 3, f. 17-18 (1891); Schaus & Clements, Sierra Leone Lep. p, 3 (1893).
Planema epaea Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 280. no 54 (1893).
Acraea gaea (!) Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 40 (1893).
Acraea epaea Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 196, 199 (1893).
Planema epaea Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 119, no. 1 (1899); Lathy, Trans. Ent.
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Nyasaland,
d, Planema epaea kivuana Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 462, no. 4 (1910).
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L. Kivu.
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Uganda, Sesse Islands.
* Heft 12 received at Tring April 1914.
FAM. NYMPHALID/® 63
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Planema tell
German East Africa.
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a. Planema tellus tellus Aurivillius, ibidem, p. 280, no. 55, f. 7 (1893).
Planema tellus Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 119, no. 2 (1899).
Planema tellus tellus Jordan, Mém. Ie Congr. Ent. t. 22, f. 21, O, t. 23, f. 27, 2 (ab. alba) (1911).
Planema tellus subsp. tellus Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 56 (1913).
Planema tellus Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13. p. 245, t. 58a (1913).
G-ab. Iustella Suffert, Iris, Vol. 17. p. 36 (1904) (Planema tellus lustella).
Planema tellus ab. subapicalis Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft 12, p. 107 (1914).
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Planema tellus platyxantha Jordan, Mém. Ie Congr. Ent. p. 399, t. 24, f. 28 (1911); Poulton, ibidem, p. 496
(1911).
Planema tellus subsp. eunmelis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 56 (1913).
Planema tellus eumelis Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 245, t. 59a (1913).
Uganda.
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Planema scalivitiata Butler, Proc. Zool. Soc. Lond. (1896), p. 826, t. 41, f. 3 (1897); Aurivillius, Svenska Vet.
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Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 242, t. 58d (1913).
’
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Acraea eurtta Hewitson (nec Linnzus, 1758, err. determ.), Exot. Butt. Vol. 4, t. 5, f. 29 (1867) (Acraea).
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Planema epiprotea Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 282, no. 56 (1893); idem, Svenska Vet. Akad. Handl.
PI. 5, Vol. 31, p.119, no. 3 (1899); idem, Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 44, p. 527, no. 12 (1910); Jordan,
Mem. Ier Congr. Ent. t. 23, f. 23 (1911); in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 53 (1913); Aurivillius, in Seitz,
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64. LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
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Planena montana Aurivillius, in Seitz, Grossschmett Vol. 13, p. 242, t. 58d (1913).
Planema montana g-ab. meruana, Aurivillius, ibidem, p. 242 (1913).
Planema montana, ab. nicega Aurivillius, ibidem, p. 242 (1913.
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Planenia aganice subsp. aganice Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 50 (1913).
Delagoa Bay to Cape Province.
7. Planema leopoldina Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 16, p. 112, no. 3 (1895). Congo, Cameroon.
Planema leopoldina Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 14, p. 416 (1895); Aurivillius, Svenska Vet. Akad.
Handl. Vol. 31, no. 5, p. 120, no. 12, t. 1, f. 1, S (1899); Jordan, in Wagner. Lep. Cat. Pt. 11, p. 54 (1913);
Aurivillius, in Seitz, Grossschmett, Vol. 13, p. 242, t. 59¢ (1913).
ab, intermissa Baede, Intern. Ent. Zeitschr. Guben, Vol. 9, p. 111 (1916) (*).
8. Planema macrosticha Bethune-Baker, Ann. Mag. Nat. Hist. (8), Vol. 2, p. 472 (1908). Congo.
? Planema macrosticha Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. Vol. 1, D. 27 (1910).
Planema macrosticha Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11. p. 55 (1913); Aurivillius, in Seitz, Grossschmett.
Vol. 13, p. 242 (1913).
g. Planema quadricolor Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol.6, p. 458,no.20, East Africa,
tha Hy tt SB (Gusto) )e Uganda.
a. Planema quadricolor latifasciata Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 635, t. 48, f. 6 (1892).
Planema latifasciata Sharpe, ibidem, p. 635, t. 48, f. 6 (1892); Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 288, footnote
(1893); idem, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 120, no. 11 (1899); Neave, Novit. Zool. Vol. 9,
p. 348 (1904); Grinberg, Deutsche Zentr. Afr. Exped. Vol. 3, p. 520 (1911).
Planema quadricolor subsp. latifasciata Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 56 (1913).
Planema quadricolor var. latifasciata Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 242, t. 58d (1913).
Uganda, Ruwenzori, Tanganyika.
b, Planema quadricolor leptis Jordan, Novit. Zool. Vol 17, p. 463, no. 6 (1910).
Planema quadricolor leptis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt 11, p. 56 (1913).
Planema quadricolor var. leptis Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 242, t. 59d (1913).
Kikuyu Escarpment
c. Planema quadricolor quadricolor Rogenhofer, Ann. Naturh. Mus. Wien, Vol. 4, p. 458, no. 20, t.15,f. 3 (1891)
Planema quadricoloy subsp. guadricoloy Jordan in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 56 (1913).
Planema quadricolor Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 242,t. 58¢ (1913).
Mt. Meru.
d, Planema quadricolor itumbana Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 463, no. 7 (1910).
Planema quadricoloy subsp, itumbana Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 56 (1914).
Planema quadricolor var. ttumbana Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 242 (1913).
German East Africa Itumba.
(*) Not known
FAM. NYMPHALIDA 65
ro. Planema adrasta \Veymer, Stett. Ent. Zeit. Vol. 53, p. 85, no. 4 (1892) (Acraea). East Africa.
a2, Planema adrasta pancalis Jordan, Novit. Zool. Vol. 17, p. 462, no. 1 (1910).
Planema adrasta subsp. pancalis Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 50 (1913).
Planema adrasta pancalis Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 243 (1913).
Tanganyika.
5, Planema adrasta adrasta Weymer, Stett. Ent. Zeit. Vol 53, p. 85, no. 4 (1802) (Acraea).
Acraea machoni Oberthur, Etud. Ent. Vol. 17, p. 29, t, 3, f. 28 (1893).
Planema adrasta Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Hand]. Vol. 31, no. 5, p. 121, no. 16 (1899).
Planema haydni Suffert, Iris, Vol. 17, p. 34, t. 2, £.7. 6, 8. Q (1904).
lanema adrasta subsp. adrasta Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 50 (1913).
Planema adrasta Aurivillius, in Seitz. Grossschmett. Vol. 13, p. 242, t. 57f (1913).
11. Planema entalis Jordan, Novit. Zool. Vol 17, p. 462, no. 2 (1910). Angola.
Planema entalis Jordan, in Wagner, Lep. Col. Pt. 11, p. 52 (1913); Aurivillius, in Seitz, Grossschmett, Vol. 13,
p. 243 (1913). — Pl. 2, Fig. 3.
12 Planema poggei Dewitz, Nova Acta Acad. Nat. Cur. Halle, Vol. 41 (2,2), Congo, Angola to Rho-
p- 18, t. 25, f. 8 Q (1879) (Acraea). desia & Uganda.
a.-Planema poggei poggei Dewitz, ibidem, p. 18, t. 25, f. 8 2 (1879) (Acraea).
Planema pogger Aurivillius, Svenska Akad. Handl. Vol. 31, No. 5, p.120, no. 8 (1899) (partim) ; Neave, Proc.
Zool. Soc. Lond. Vol. 1, p. 27 (1910).
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Planema poggei subsp. pogget Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11. p. 55 (1913).
Planema poggei Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 243, t. 58d (1913); Strand, Arch .f. Naturg. Vol. 79,
Abt. A, Helft. 12, p. 108 (1914).
Angola, Rhodesia to Lake Victoria.
5 Planema poggei nelsoni Grose-Smith & Kirby, Rhop. Exot. Vol. 1, t. 3,f.9, 10, S (1892) (Acraea).
Acraza poggei var. Grose-Smith, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 466 (1890).
Planema poggei Auriyillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, No. 5, p, 120, no. 8 (1899) (partim); Trimen,
Proc. Ent. Soc. Lond. p. 39 (1903); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 348(1904); idem, Trans. Ent. Soc.
Lond. p. 218 (1906) ; Poulton, ibidem, p. 63 (1909); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 77, t. 8,f. 2, 2 (1910);
Carpenter, Trans. Ent. Soc. Lond. (1912) p. 704 (1913).
Planema poggei nelsoni Jordan, Mém. ler Congr. Ent. p. 389, t. 21, f. 3, 5, 4, 2 (1911); Poulton, ibidem, p. 486,
492 (IgII).
Planema poggei subsp. nelsoni Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 55 (1913).
Planema pogget nelsoni Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 243 (1913).
Congo, Uganda.
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Acraza euvita Hewitson (nec Linnzus, 1758), Exot. Butt. Vol. 4, t. 4. f. 28 (1867) (Acraea).
Acraea euryta ibidem, text (1867); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 134 no. 37 (1871).
Acraea elongata Kirby, ibidem, p. 719, no. 90 (1877); Godman & Salvin, in Jamesson, Story Rear-Coll. p. 430,
no. 16 (1890).
* Planema elongata Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 283, no. 58, p. 288 (1893); idem, Svenska Vet. Akad.
Handl. Vol. 31, No. 5, p. 120, no. 5 (1899); Eltringham, Afr. Mim, Butt. p. 75 (1910); Jordan, Mém.
Ier Congr. Ent. p. 70, t. 22, f. 16, O (1911); in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 51 (1913); Aurivillius, in Seitz,
Grossschmett. Vol. 13, p. 244, t. 58be (1913); Strand. Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft. 12, p. 108 (1914).
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Acraca formosa Druce, Proc. Zool. Lond. p. 408, no. 19 (1875).; Kirby, Cat. diurn. Lep p. 719, no. 94 (1877).
Planema formosa Sharpe, Iris, Vol. 4, p. 56, no. 21 (1891); Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, No.5,
p. 120, no. 9 (1899); Suffert, Iris, Vol. 17, p. 37 (1906); Griinberg, Sitzb. Nat. Freunde Berlin, p. 167
1910); Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 54 (1913); Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 243,
t. 596 (1913).
66 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
15. Planema macarista Sharpe, Ann. Mag. Nat. Hist. (7), Vol. 18, p, 76 (1906). Cameroon to
— PI. 2, Fig. 14. Uganda.
Acraea poggei Dewitz (nec idem, 1879), Ent. Nachr. Vol. 15, p. 104 (1889) (partim).
+ Acraea pogget Karsch, ibidem, Vol. 18, p. 170, no. 17 (1892).
Planema formosa latefasciata Suffert (nec latifasciata Sharpe, 1892), Iris, Vol. 17, no. 37 (1904).
? Planema formosa moforsa Suffert, ibidem, p. 17, no. 37 (1904).
Planema plagioscia Bethune-Baker, Ann. Mag. Nat. Hist. (8), Vol. 2, p. 471 (1908); Rosenberg, Proc. Ent.
Soc. Lond. p. 29 (1910).
Planema macarista Eltringham, Afr. Mim. Butt. p.77, t 7,f.3, 9, t. 8,f. 1, & (1910).
Planema vendita Griinberg Sitzb. Ges. Nat. Freunde Berlin, p. 165, f. 3 G, 4 2 (1910).
Planema latefasciata Grinberg, ibidem, p. 165 (1910).
Planema maforsa Griinberg, ibidem, p. 165 (1910).
Planema macarista Griinberg, ibidem, p. 167 (1910); Jordan, Mém. [et Congr. Ent. t. 23, f. 24 (1911); Poulton,
ibidem, p. 486, 492 (1911); Poulton, Bedrock, p. 59, f. 5, 6 (1912); Carpenter, Trans. Ent. Soc. Lond.
(1912) p. 703 (1913); Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 56 (1913); Aurivillius, in Seitz, Grossschmett.
Vol. 13, p. 243, t. 5gbd (1913).
Planema macarista, ab. plagioscia Aurivillius, ibidem, Vol. 13, p. 243 (1913).
Planema macarista, 5 ab. latefasciata Aurivillius, ibidem, Vol. 13, p. 243 (1913).
Planema macarista, S ab. moforsa Aurivillius, ibidem, Vol. 13, p. 243 (1913).
Planema macarista, © ab. vendita Aurivillius, ibidem, Vol. 13, p. 243 (1913).
16. Planema obliqua, Aurivillius, in Seitz, Grossschmett.Vol. 13, p. 243 (1913). Fongo Tunga.
17, Planema excisa Butler, Cist. Ent. Vol. 1, p. 212 (1874). —Pl.2, Fig. 15. Cameroon to Congo,
Fernando Po.
Acraea euvita Hewitson (nec Linnzus, 1758), Exot. Butt. Vol. 4, t. 4,f. 26, G6, t. 5, f. 31, Q (1867) (Acraea) ;
Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 12, p.202, no. 45 (1891).
Acraea euryta Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, t. 4 text (1867); Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 134, no. 37 (1871) (partim)
Acraea excisa Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 719, no. 93 (1877).
Planemaexcisa Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 283, no. 59 & p. 288 (1893).
Planema indentata Butler, Ann, Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 16, p. 416 (1895) (partim, 2, nec ©).
Acraea (Planema) pseudeuryta Staudinger (nec Godman & Salvin, 1890), Iris, Vol. 9, p. 210 (1896).
Planema excisa Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 120, n. 6 (1899).
Planema indentata Aurivillius, ibidem, p. 122, no. 23 (1899) (partim).
Q, Planema umbra vabuma Suffert, Iris, Vol. 17, p. 38 (1906).
Planema excisa Aurivillius, Ann, Mus. Stor. Nat.Genova, Vol. 44, p. 518, no. 21 (1910); Jordan, Mem. [er Coner.
Ent. t. 23, f. 26, 2 (1911); in Wagner, Lep. Col. Pt. 11, p. 53 (1913); Aurivillius, in Seitz, Grossschmett.
Vol. 13, p. 244, t. 58¢ (1913); Strand. Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft 12, p. 108 (1914).
18. Planema indentata Butler, Ann. Mag. Nat. Hist.(6), Vol. 16, p.416 (1895) (partim) Cameroon to
(oF mee ©); Angola.
Planema indentata Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 13, no. 5, p. 122, no. 23 (1899).
Planema excisa Jordan (nec Butler, 1874), Mém. Tet Congr. Ent, t. 22, f. 18, O (1911).
Planema indentata Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 54(1913); Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13,
p- 254, t. S9e (1913).
19. Planema pseudeuryta Godman & Salvin. in Jameson, Story Rear-Col. p. 429, Congo, Angola,
no. 15 (1890) (Acraea). — Pl. 2, Figs. 2 & 16. Uganda.
? Acraca poggei Dewitz, Ent. Nachr. Vol. 15, p. 104 (1898) (partim).
Acraea (Planema) dewiizi Staudinger, Iris, Vol. 9, p. 209, t. 2, f. 3 (1896).
Planema dewitzi Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 120, no. 7 (1899).
Planema formosa angulata Suffert, Iris, Vol. 17, p. 38 (1904).
Planema dewitzi Grinberg, Sitzb. Ges. Nat. Freunde Berlin, p. 167 (1910).
Planema pseudeuryta Jordan, Mém. Ier Congr. Ges. Ent. t. 22, f. 20, O (1911); idem, in Wagner, Lep. Cat.
Pty Tl) p54 (T9LS).
Planema dewitzi Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, t. 58¢ (1914).
Planema pseudeuryta Aurivillius, ibidem, Vol. 13, p. 243 (1913).
Planema pseudeuryta angulata Aurivillius, ibidem, Vol. 13, p. 244 (1913) (an ad macaristam vefer. ?).
FAM. NYMPHALIDZ® 67
20. Planema macaria Fabricius, Ent. Syst. (1), Vol. 3, p. 174, no. 540 (1793) (Papilio West Africa,
Helicontus). Semliki.
a, Planema macaria macaria Fabricius, ibidem, Vol. 3, p. 174, no. 540 (1793).
Papilio Heliconius euryta Cramer (nec Linnzeus, 1758, err. deterym.), Pap. Exot. Vol. 2, p. 69, t. 233, f. B (nec A)
(1779).
Papilio Heliconius euryia Herbst, Naturs. Schmett.Vol. 4, p. 202, no. 73, t. 80, f. 6 (1790) (partim); Fabricius, Ent.
Syst. (x), Vol. 3, p. 172, no. 534 (1793) (partim).
Acraea macaria Godart, Enc. Meth. Vol. 9, p. 237, no. 23 (1819).
Acraea euryta Godart, ibidem, p. 238, no. 25 (1819).
Acraea (sect. Planema) euryta Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1. p. 140, no. 17 (1848).
Planema euryfa Butler, Cat. diurn. Lep. descr. Fabr. p. 129, no. 2 (1869).
Acraea euryta Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 134, no. 37 (1871) (partim); Mdéschler, Abh. Senck. Ges. Frankfurt,
Vol. 15, p. 56, no. 44 (1887).
Acraza macaria Aurivillius, Rec. crit. Lep. Mus. Lud. Ulr. p. 40 (1882).
Planema zuryta Schaus & Clements, Sierra Leone Lep. p. 3 (1893).
Planema macaria Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 285, no. 289 (1893); idem, Svenska Vet. Akad. Handl.
Vol. 31, no. 5, p. 122, no. 20 (1899); Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 46, t. 3, f. 17 (1910).
Planema macaria subsp. macaria, Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 54 (1913).
Planema macaria, Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 240, t. 57 f (1913).
Sierra Leone to Niger.
b. Planema macaria macarioides Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 284, no. 61 (1893).
Acraea euryta Aurivillius, ibidem, Vol. 12, p. 202, no. 45 (1891) (partim).
Acraea macaria Karsch, Ent. Nachr. Vol. 18, p. 170, no. 15 (1892).
Planema macarioides Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 122, no. 19 (1899).
Planema macaria macartosdes Jordan, Mem. Iet Congr. Ent t. 23,f. 25 (1911).
Planema macaria subsp. macarioides Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 54 (1913).
Planema macarioides Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 241, t. 57 f. t. 58¢ f (1913); Strand, Arch.
f. Naturg. Vol. 79. Abt. A., Heft 12, p. 108 (1914).
> ab. hewitsoni Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 122, sub. no. 19 (1899).
Acraea eurita Hewitson (nec Linnzus, 1758), Exot. Butt. Vol. 4, t. 4, f. 24 (1867) (Acraea).
Acraea euryta Hewitson, ibidem, text (1867).
Planema macarioides hewitsoni Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 241 (1813).
Cameroon to Angola
c. Planema macaria hemileuca Jordan, Novit. Zool. Vol. 21, p. 254 (1914).
Semliki Valley.
21. Planema umbra Drury, Ill. Exot. Ins. Vol. 3. p. 23, t. 18, f. 1, 2 (1782) Sierra Leone to
(Papilio Danaus Festivus). Cameroon.
Papilio Heliconius eurita Cramer (nec Linnzus, 1758 err. determ.), Pap. Exot. Vol. 3. p. 69, t. 233, f. A (1779).
Papilio Heliconius euryta Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 4, p. 202, no. 73, t. 80, f. 5 (1790) (partim); Fabricius,
Ent. Syst. Vol. 3 (1), p. 172, no. 534 (1793) (partim).
Papilio umbra Herbst, Naturs. Schmett. Vol. 6, p. 20, no. 8, t. 121. f. 4, 5 (1793).
Papilio Heliconius umbra Fabricius, Ent. Syst. Vol. 3(1), p. 172, no. 535 (1793).
Actinote umbra Hiibner, Verz. bek. Schmett. p. 27, no. 211 (1816-7) (partim).
Acraea umbra Godart, Enc. Méth. Vol. 9, p. 236, no. 20 (1819).
Acraca euryta Godart, ibidem, p. 238, no. 25 (1819) (partim).
Acraca umbra Drury, ed. Westwood, III. Exot. Ins. Vol. 3, p. 24, t. 18, f. 1, 2 (1837).
Acraca (sect. Planema) umbra Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 141,no 18 (1848).
Acrasa eurita Hewitson, Exot. Butt. Vol. 4, t. 5, f. 27, 32 (1867) (Acraea).
Acraea euryta Hewitson, ibidem, text (1867).
Planema macaria Butler, Cat. diurn, Lep. descr. Fabr. p. 130, no. 3 (1869).
Acraza euryta Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 134, no. 37 (1871) (partim).
Acraca euryta var. a. umbya Kirby, ibidem, p. 134, sub no, 3 (1871) (partim).
Acraza euryta Mabille, Bull. Soc. Zool. France, Vol. 1, p. 202 (1876) (partim); Fromholz, Berl. Ent. Zeitschr.
Vol. 31, p. 90 (1887); Dewitz, Ent. Nachr. Vol. 15, p. 104 (1889); Aurivillius. Ent. Tidskr. Vol. 12. p. 202,
no. 45 (1891); Karsch, Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38. p. 199, no. 78 (1893).
Planema umbra Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 283, no. 60, t.5,f.5, 5a (1893); Schaus & Clements, Sierra
Leone Lep. p. 3 (1893); Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 121, no. 18 (1899); Lathy,
Trans. Ent. Soc. Lond. p. 187,no 43/1903); Jordan, Mém. let Congr. Ent. t. 22, f. 13, O (1911); idem, in
Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 56 (1913); Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 241, t. 58f (1913) ;
Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft 1z, p. 108 (1914).
Planema umbra g-ab. fasciata Aurivillius, ibidem, p. 241 (1913).
68 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
22, Planema alcinoe Felder, Reise Novara, Lep. t. 46, f. 12-13 (1865)(Acraea). West Africa, Uganda.
a. Planema alcinoe alcinoe Felder, ibidem (1865).
Papilio euryta Palisot (nec ewrita Linnzus, 1758, err. determ.), Ins. Afr. Amér. p. 262, t. 7, f. 4, 9 (1821).
Acraea euryta Lucas, Lép. Exot. p. 109, t. 52, f. 2, 2 (1835).
Acraea alcinoe Felder, Reise Novara, Lep. p. 368, no. 530 (1867).
Acraea euryta Hewitson, Exot. Butl. Vol. 4, t. 4, text (1867) (Acraea).
Acraea eurita Hewitson, ibidem, Vol. 4, t. 4, f. 23, O (1867).
Acraea euryta var b. alcinoe Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 134, sub no. 37 (1871).
Acraca euryta Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 134, no. 37 (1871) (partim); Mabille, Bull. Soc. Zool. France, Vol.
Pp. 202 (1876) (partim.); Mabille, Hist Nat. Madag, Lép. p. 117, no. 21,t. 12, f. 5 (1885-87); Méschler, Abh
Senck. Ges. Frankfurt, Vol. 15, p.55, no. 44 (1887) (partim).
Q Acraea timandra Karsch (ex Lucas), Berl. Ent. Zeitschr. Vol. 38, p. 199, no. 79, 2 (1893).
Acraea euryta var. alcinoe Haase, Unters. Mim. Vol. 2, p. 40 (1893).
Planema alcinoe Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 289 (1893); idem, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5,
p. 121, no. 17 (1899); idem, Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol. 46, p. 513, no. 7 (1910); Eltringham, Afr.
Mim. Butt. p. 77 (1910); Jordan, Mém Ier Congr. Ent. t. 22, f. 14, 15, g (1911); Poulton, Bedrock,
Dao Sater 2) (Lolz).
2 Planema godmani Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 16, p. 415 (1895).
Planema godmanni Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 122, no. 22 (1899).
Planema alcinoe subsp, alcinoe Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 51 (1913).
Planema alcinoe Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 241, t. 57f (1913).
Sierra Leone to Niger, I. do Principe.
6, Planema alcinoe camerunica Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 285, no. 62, t 5, f. 4a, b, t. 6, f. 4, 5 (1893)
(Planema alcinoe var.).
Acraea euryta Mabille, Bull. Soc. Zool. France, Vol. 1, p. 202 (1876) (partim).
Acraea euryta var. alcinoe Dewitz (nec Felder, 1865), Ent. Nachr. Vol. 15, p. 104 (1889).
Acraea alcinoe Sharpe, Iris, Vol. 4, p. 55, no. 23 (1891). ;
Planema salvini Butler, Ann, Mag. Nat. Hist. (6); Vol. 16, p. 415 (1895); Aurivillius, Svenska Vet. Akad.
Handl. Vol. 31, no. 5, p. 122, no. 24 (1899).
Planema alcinoe var. camerunica Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol, 31, no. 5, p. 121 sub no. 17 (1899).
Planema camerunica Lathy, Trans, Ent. Soc. Lond. p. 187, no. 42 (1903).
¢ Planema godmani Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 348 (1904).
Planema alcinoe Poulton, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 63 (1909).
Planema alcinoe var. camerunica Grinberg, Sitzb. Ges. Nat. Freunde Berlin, p. 150 (1910); Eltringham, Afr.
Mim. Butt. p. 77 (1910).
Planema alcinoe camerunica Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13,p 241, t. 58¢, f (1913).
Cameroon to Congo. Uganda.
23. Planema consanguinea Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14. p.282,f.8(1893). West Africa, Uganda.
a. Planemaconsanguinea sartina Jordan, Novit. Zool. Vol. 17. p. 462, no. 2 (1910).
Planema consanguinea Eltringham, Afr. Mim. Butt. p. 65, t.5,f. 18, S (1910).
Planema consanguinea sartina Aurivillius, in Seitz, Grossschmett.Vol. 13, p. 244 (1913).
Gold Coast.
4, Planema consanguinea consanguinea Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14 p. 282, f. 8 (1893).
Acraea euryta Hewitson (nec Linnaeus, 1758, err. determ.), Exot. Butt. Vol. 4, t. 4, text (1867) (Acraea).
Acraea eurita Hewitson, ibidem, t. 4, f. 22, t. 5, f. 30 (1867).
Acraea euryta Dewitz, Ent. Nachr. Vol. 15, p. 104 (1889); Aurivillius, Ent. Tidskr. Vo]. 12, p. 202, no. 45 (1891).
Planema consanguinea consanguinea Jordan, Mém. Ie Congr. Ent. t. 22, f. 17, S (1911).
Planema consanguinea subsp. consanguinea Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 52 (1913).
Planema consanguinea consanguinea Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 244, t. 58d (1913).
ab. intermedia Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 120 sub no. 4 (1899).
Acraea consanguinea var. Karsch, Ent. Nachr. Vol. 21, p. 289 (1895).
Planema consanguinea consanguinea ab. intermedia Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 244 (1913).
t BARS
Niger to Congo.
6. Planema consanguinea albicolor Karsch, Ent. Nachr. Vol. 21, p. 280 (1895).
Planema albicoloy Karsch, ibidem, p. 280 (1895); Butler, Ann. Mag. Nat. Hist. (6), Vol. 16, p. 416 (1895).
Planema consanguinea var. Q (ab. ?) albicolor Autivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5, p. 120 sub
no. 4 (1899).
FAM. NYMPHALID# 69
aarenarta Sharpe. The Entomologist, Vol. 35, p. 135 (1902); Neave, Novit. Zool. Vol. 11, p. 348 (1904).
Planema albicolor Grinberg Sitzb. Ges. Nat. Freunde Berlin, p. 150 (1910).
Planema consanguinea subsp. albicolor Jordan, in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 52 (1913).
Planema arenayvia Carpenter, Trans. Ent. Soc. Lond. (1912), p. 704 (1913).
Planema consanguinea albicolor Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 244, t, 57¢, t. 58D (1913).
Uganda.
24. Planema vestalis Felder, Reise Novara, Lep. t. 46, f. 8-9 (1865) (Acraea). West Africa.
a. Planema vestalis vestalis Felder, ibidem, t. 46, f. 8-9 (1865) (Acvaea).
Acraea eurita Hewitson {nec Linnzus, 1758, err. determ.), Exot. Butt. Vol. 4, t. 4,f. 21, SO (1867) (Acraea).
Acraeaeuryta Hewitson, ibidem, text (1867).
Acraea vestalis Felder, Reise Novara, Lep. p. 369, no. 53 (1867).
Acraea euryta var. vestalis Kirby, Cat. diurn. Lep. p. 134, sub no. 37 (1871).
Acraea euryta MOschler Abh. Senck. Ges. Frankfurt, Vol. 15, p. 56, no. 44 (1887) (partim).
Acraea euryla var. vestalis Haase, Unters. Mim. Vol. 2. p. 40 (1893).
Planema vestalis Aurivillius Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no 5, p. 122, no. 21 (1899) (partim); Eltring-
ham, Afr. Mim. Butt. p. 70, t. 6, f. 13, S (1910).
Planema vestalis vestalis Jordan, Mém. 1& Congr. Ent. t. 22, f. 12 (1911).
Planema vestalis subsp. vestalis Jordan,in Wagner, Lep. Cat. Pt. 11, p. 87 (1913).
Planema vestalis vestalis Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 240, t. 58¢ (1913).
Sierra Leone to Nigeria.
56. Planema vestalis stavelia Suffert, Iris, Vol. 17, p. 39 (1906).
Acraea vestalis Godman & Salvin, in Jameson, Story Rear-Col. p. 429, no. 14 (1890).
Planema vestalis Aurivillius, Ent. Tidskr. Vol. 14, p. 289 (1893); Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 31, no. 5,
p- 122, no. 21 (1899); Lathy, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 187, no. 44 (1905); Aurivillius, Ann. Mus. Stor.Nat.
Genova, Vol. 44, p. 527, no. 12 (1910); Strand, Arch. f. Naturg. Vol. 79, Abt. A, Heft 12, p. 108 (1914).
Planema vestalis subsp. stavelia Jordan, in Wagner. Lep. Cat. Pt. 11, p. 57 (1913).
Planema vestalis stavelia Aurivillius, in Seitz, Grossschmett. Vol. 13, p. 240, t. 59a (1913).
Cameroon to Congo.
70 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
GENUS PARDOPSIS TRIMEN
Acraea Boisduval (nec Fabricius, 1807), Faune Madag. Bourb. et Maurice, p. 31 (1833); Trimen,
Rhop. Afr. Austr. p. 105 (1862).
Pardopsis Trimen, S. Afr. Butt. Vol. 1, p. 183 (1887); Aurivillius, Svenska Vet. Akad. Handl. Vol. 3r,
p. 80, n. 5 (1899); Eltringham, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 4 (1912).
Genotype. — P. punctatissma Boisduval (1833).
Characters. — Differs from Actinote, Acraea and Planema especially in the antennae, legs and
neuration.
The antenna is strongly clavate, the club being broad and rather abrupt; the shaft is completely
covered with dentate scaling, there being no grooves and no carinae; underside of club and entire last
segment without scaling, with distinct grooves and three carinae, the Jatter being low, obtuse and incons-
picuous, contrasting with the sharp carinae found in the three previous genera.
The labial palpus as in Acraea, slender, derm pale, upper and under sides rough with hair-scales
and bristles, outer and inner sides covered with entire, denticulate or bidentate scales, the hair-scales
not feathery.
The proboscis bears at and near the apex about six papillae on each side, the papillae being sub-
cylindrical, non-dentate at the apex, with the usual apical central conical projection.
The fore tibia of the Gt is somewhat longer than the fore femur and bears long hair-scales and a
few stout spines on the ventral surface, the dorsal and lateral surfaces being covered with elongate but
broad, more or less irregularly bidentate, scales. The fore tavsus of the Gf is not much shorter than the
femur; it is non-segmented, but a few spines placed at intervals indicate the apices of the segments;
scaling as on the tibia; claw-segment represented by a strongly chitinized pointed hispid cone. In the Q
the fore tibia has no long hair-scales, but is smoothly covered on all sides with elongate broad scales; it
bears a few stout-spines on the ventral surface on each side, one of them being apical. The fore tarsus of
the 9 consists of five segments, the upper side being scaled like the tibia, and the ventral surface minu-
tely hispid only, without scales; segments 1 to 4 bear strong apical spines, the first segment having in
addition several ventro-lateral spines; segments 2 to 5 are swollen at the base and provided on each side
with a bundle of pale (sensory) bristles placed close behind the apical spine of the preceding segment.
The mid and hind tibiae and tarsi have no strong bristles on the dorsal surface, excepting the apices
of the distal tarsal segments, the dorsal spines found in Acraea, etc., being represented in Pardopsis by
pale inconspicuous hairs. The apical hispid spurs of the mid and hind tibiae are absent. The parony-
chium of the claw-segment is as strongly developed as in Avgynnis, bearing two lobes on each side, the
upper lobe being longer than the lower one; the fwlvillus is likewise large; and the claws are simple, not
bearing a basal lobe or tooth.
The shape of the body and wings as well their scaling is essentially the same as in Acraea.
The distal margins of the wings are entire; the scaling is not dense. the scales being non-dentate except
in the distal areas. The long hair-scales on the veins and in the fringes are simple, none of them being
deeply forked. The basi-costal lobe of the hindwing is prominent.
Neuration. — SC! of the forewing from the cell, SC? to SC® stalked together and branching off
along dictance proximally to the cell-apex, R! and R® (arising from or from near upper cell-angle, sepa-
rately or conjointly, R* from lower cell-angle, first discocellular D!) long, almost parallel with costa,
D? short or absent, D® long, oblique, slightly incurved, lower cell-angle 90° or somewhat less. In hind-
FAM. NYMPHALIDA® 71
wing the cell almost symmetrical, subcostal branching off on a level with M? or a little more distally,
the four discocellulars, D! to D4, almost of even length, D? not distinctly incurved; D? in both wings as
strongly developed as the other cross-veins, the cell being closed.
The separation of the subcostals of the forewing from the radials is a most interesting characte-
ristic of Pardopsrs. In the most generalised venation of Lepidoptera the veins arise direct from the cell;
such neuration, or stages slightly later, are observed in the Tineids, many Zygaenids, Lycaenids, Hes-
perids and others. The difference between Pardofsis and Acraea recurs in other groups of Lepidoptera,
f. i. in the Saturnids : the cocoon-spinning forms allied to Attacus, Saturnia, etc., correspond to Pardopsis
in the position of the subcostals, and in the Ceratocampids and other American forms which pupate in
the ground (Arsenura, etc.) the subcostals and radials have a similar position as in Acraea.
In the neuration and the structure of the tarsal claw. segment Pardofsis is a generalised type,
which would best be placed at the beginning of the Nymphalinae as a connecting link with the Acraernae.
Early stages not known.
Geographical Distribution. — One species, distributed over East Africa and Madagascar.
Evidently a Malagassic species which has spread to the continent in comparatively recent times.
1. Pardopsis punctatissima Boisduval, Faune Madag. Bourb. et Mau- Madagascar; Cape to
rice, p. 31, n. 5, pl. 6, fig. 2 (1833) (Acraea). Abyssinia,
Acraea stictica Boisduval, in Deleg. Voy. Africa austr. Vol. 2. p. 590, n. 51 (1847).
Acraea (sect. Telchinia) punctatissima Doubleday, Gen. diurn. Lep. Vol. 1, p. 142. n. 34 (1848).
Acraca punctatissima Trimen, Rhop. Africa austr. Vol. 1, p. 105, n. 66 (1862); Kirby. Cat. diurn. Lep. p. 132,
n. 23 [1871).
Acraea punctatissima var. a. A. stictica, Kirby, ibidem, p. 133 (1871).
Acraea punctatissima Oberthur, Ann. Mus. Stor. Nat. Genova, Vol, 18, p. 719, n. 32 (1883); Saalmiiller, Lep.
Madag. p. 75 (1884); Staudinger, Exot. Tagf. p. 84, pl. 33, G (1885); Mabille, in Grandidier, Hist. Nat.
Madag. Lép. p. 114, n. 18, pl. 11, fig. 14 (1885-1887).
Pardopsis punctatissima Trimen, S Afr. Butt. Vol. 1, p. 183, n. 56 (1887).
Acraea punctatisssma Brunner, Farbenpr. Insekt. p. 5, pl. 4, f. 44 (1897); Jordan, Novit. Zool. p. 387 (1898).
Pardopsis punctatissima Sharpe, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 524, 531 (1896); Butler, ibidem, p. 692 (1897);
ibidem (1897). p. 924 (1898) ; ibidem, p. 4or (1898); Distant, Ann. Mag Nat. Hist. (7). Vol. 1, p. 50 (1898);
Aurivilliers, Svenska Vet.-Akad. Handl. Vol. 31, n. 5, p. 80, 81, text fig. 7 (1899); Butler, Ann. Mag. Nat.
Hist. (7), Vol. 4, p. 375 (1899); ibidem (7), Vol. 7, p. 27 (1901); Marshall, Trans. Ent. Soc. Lond. p. 305,
307, 308, 314, 315 (1902); Roger, ibidem, p. 534 (1998); Neave, Proc. Zool. Soc. Lond. p. 11 (1910);
Eltringham, Afric. Mimet. Butterfl. p. 89, 115 (1910); Trans. Ent. Soc. Lond. p. 4 (1912); Aurivillius),
in Seitz, Grossschmett, Vol. 13, p. 288, pl. 53a (1914).
72 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
INDEX
Pages
Alama, (AC) IElewWe ¢ 4 658 6 of 0 o boa ae YF aganice aganice (Plan.) Hew. .
ADAM AERA (ACE) IRIN 6 oc a 0 6 @ 6 6 9 aganice montana (Plan.) Butl.
abanarcapnodesi(Aict)) ord 3 em ae a agema var. (Acr.) Fruhst.
allot (Aer) gO, 5 ¢ 6 4 o op 6 oe moo om aglaonice (Acr.) Westw.
AOSTA (HACE) ISIC ob 5 a9 6 6 6 @ 9 0 9 ut aglaonice aglaonice (Acr.) Westw.
acerataaceratal ACh.) PELCwyr i ice le) et nnd aglaonice aglaonicc f. leucaspis (Acr.) Wichgr.
acerata acerataf. brahmsi(Acr.) Suff.. . . . . . 44 aglaonicef. albofasciata (Acr.) Aur.
acerata acerata f. diavina (Acr.)Suff,. . . . . . 44 alalia (Act.) Feld. .
acerataacerata f. ruandae (Acr.) Griimb.. . . . . 44 alalia alalia (Act.) Feld.
acerata acerata f. tenella(Acr) Rog. . . - . . . 44 alalia conspicua (Act.) Jord.
acerata acerata f. vinidia(Acr.)Hew.. . .. . . 44 albomaculata (Acr.) Weym.
acontiasiabsdecoray(Acr.)Weyma = 3) 4 2 « = 33 alcinoe (Plan.) Feld. .
AYGOrIAS (UArere.)) WEES co! ol > oo « 68 6 o © @ oS alcinoe alcinoe (Plan.) Feld.
ING RAC AU Perimrm mare vin GubM on | al gcy ei Veit copenew a) | set gO) alcinoe camerunica (Plan.) Aur, .
Giedite, (A@r) IRI 6 6 6 0 a 6 0 6 6 6 0 o oe alcione (Act.) Hew.
accia (Aer) min, «5 oa do o 67a o of o ve) ok alcione alcione (Act.) Hew.
acnitaespauperatan(Acr.) aahur.c) 5) cate! i) 1 34 alcione corduba (Act.) Hew.
acritajacrita(Acr.) Hew. 3) 2 = . 4 oy po 6 oh alcione elatus (Act.) Druce
acrita acrita f. aquilina (Acr.) Strand 34 alcione melina(Act.) Jord .
acrita acrita f.msamwiae (Acr.) Strand . . . . . 34 alcione messeres (Act.) Jord.
acrita acrita f. nyassicola(Acr.) Strand . . . . . 34 alcione salmonea (Act.) Jord.
acritagambiotan(Acrs)) Daim sp) ete ee 14) alcione sarsanda (Act.) Druce
acnitasbellonar(Acn)VWVicyioe sealers Gein ey ein iss OS alcione sodalis (Act.) Butl.
acrita bellona f. bella (Acr.) Weym. 33 alcione subelatus (Act.) Jord.
Creritias Ihtdcomev bis: (Nem Ialsys 5 5 og 6 6 o oo oh alcione theophila (Act.) Dogn.
acrita littoralis f aquilia(Acr.) Thur. . . . . . . 34 alcione varians (Act.) Jord.
acrita littoralisf. chaeribulula (Acr.) Strand . . . 34 alciope (Acr.) Hew.
acrita littoralis f. usaramensis (Acr.) Strand . . . 34 alciope (Acr.) Poult. .
aciia meno (Aver. Anti 5 6° 6 6 56 56 5 6 o 6 Sv alciope alciope (Acr.) Hew.
acrita mancaf. lindica(Acr.)Strand . . . . . . 34 alciope alciope f. aurivillii (Acr.) Staud.
acritaypudonimal(Acr.)staud: |. = «= 34 alciope alciope f. bakossua (Acr.) Strand .
acrita pudorinaf. utengulensis(Acr.) Eltr. . . . . 34 alciope alciope f. cretacea(Acr.) Eltr. .
acrita pudorina f. emboensis (Acr.) Baede . . . . 34 alciope alciope f. fumida (Acr.) Eltr.
facromy.ctar(Acra|mWieStWayuieaue a ee as 8 alciope alciope f. latisfasciata (Acr.) Griinb.
factlacaalACrA Pewee ri ci ee ul ae on is ys, 2 alciope alciope f. macarina (Acr.) Butl.
Actinotevelitbtmey os fo a se oe eh OD alciope alciope f. tella (Acr.) Eltr.
HEwioohae, (Aes) IEAM 6 5G 6 s o Bb 5 6 5 og 6 oo alciope schecana (Acr.) Rothsch. & Jord. .
acutipennis(Acr.)\Wathy 5 2 . . = - Sree ees alciope alciope f schecana (Acr.) Rotsch. & ie
aghmaina (Aer) IRIE § 59 6 os 0 4 5 o 9 « AS alciope alciope f. edea (Acr.) Strand
admathajadmathal(Acr;) Hew. 3 9) 2 . « . - « 20 alciope alciope f. lomana (Acr.) Strand.
admatha admatha f. bodpis (Acr.) Wichgr. . . . . 26 alicia (Plan.) Gr.-Smith .
admatha admatha f. leucographa(Acr.)Ribbe . . . 26 althofh (Acr.) Dewitz
ado (Ace) Jord s 2 5 9 5 0 o 6 Bb 0 6 a LO althoffi (Acr.) Eltr. :
agate, (IPlem.)) Wey, o ¢ o 2 o 6 4 6 6 6 5 OD althoff althoff (Acr.) Dewitz .
Aakasia achasizs (i2ein) Wey, 5 5 6 5 8 6 5 5 Oo althoffi althoffi f. drucei (Acr ) Eltr.
adrasta;pancalits|(elams)sjordae) weru-newe ce OD althoffi althoffi £. ochreata (Acr.) Eltr. .
aEMieS (IPlem,)) ISI 5 5-5 0-5 6 50 0 6 6 0 OS althoffi althoffi f. rubrofasciata (Acr.) Aur.
Pages
nn
mn ON
IS oR ds ds dS ch Gi G Ga Gy Ge WW Gey G
HOD a OAM AE Hig a
althofh althoffi f. telloides (Acr.) Eltr. .
althofi pseudepaea (Acr.) Dudgeon .
anacreon (Acr.) Trim.
anacreon anacreon (Acr.) Trim. .
anacreon anacreontica (Acr.) Gr. Smith
anacreon bomba (Acr.) Gr. Smith
anacreon speciosa (Acr.) Wichgr.
anaxo (Act.) Hopff.
anaxo anaxo (Act.) Hopff. .
anaxo comta (Act.) Jord.
andromacha (Acr.) Fruhst.
andromache (Acr.) F.
andromache andromache (Acr.) F. .
FAM. NYMPHALIDA
Pages.
46
andromache andromache f. oenone (Acr.) Kirby . . 59
andromache f. indica (Acr.) R6b. 59
andromache sanderi (Acr.) Rothsch.. 59
andromba (Acr.) Gr.-Smith 25
anemosa (Acr.) Hew. . 28
anemosa (Acr.)Staud. 28
anemosa anemosa (Acr.) Hew. ahiace, 28
anemosa anemosa f. arcticincta (Acr.) Butl. . 28
anemosa anemosaf. discoguttata (Acr.) Strand. . . 28
anemosa anemosa f. dubiosa (Acr.) Suff. 28
anemosa anemosa f. interrupta (Acr.) Thur. . 28
anemosa anemosa f. mosana Suff.. 28
anemosa anemosa f. ufipana (Acr.) Strand 28
anemosa anemosa f. urungensis (Acr.) Strand 28
anemosa var. (Acr.) Dewitz. 28
angolanus ab. Lathy . 51
anomala (Acr.) Koll. . . 60
anteas (Act.) Doubl. 15
ansorgei (Acr.) Gr.-Smith 54
amicitiae (Acr ) Heron 54
amicitiae amicitiae (Acr.) Heron. 54
amphilecta (Act.) Jord. . 13
amphimalla (Acr.) Westw. . 35
apecida var. flavomaculatus (Acr.) Lanz . 43
arctifascia (Plan.) Butl. . 56
asboloplintha (Acr.) Karsch 39
asboloplintha (Acr.) Suff. 39
asboloplintha asboloplintha (Acr.) Karsch 39
asboloplintha rubescens (Acr.) Trim. 39
asema (Acr.) Hew.. 31
asema (Acr.) Trim. 32
asema asema (Acr.) Hew. 31
asema f. gracilis (Acr.) Wichgr. . 32
atergatis (Acr.) Westw. . 38
atolmis (Acr.) Westw.. 33
atolmis atolmis (Acr.) Westw.. 33
atolmis f. decora (Acr.) Weym. 33
aubyni (Acr.) Eltr. 52
aureola (Acr.) Eltr. 33
axina (Acr.) Westw. . 37
balbina (Acr.) Ob.
barberi (Acr.) Trim. .
baumanni (Acr.) Rog.
baxteri(Aicr))/Shanpes
baxteri baxteri (Acr.) Sharpe .
baxteri baxteri f. subsquamia (Acr.) Thur.
baxteri baxteri f. fulleborni (Acr.) Thur. .
bellua (Acr.) Wall.
bendis (Acr.) Hiibn. .
beni (Acr.) Beth. Bak.
bergeri (Acr.) Baede.
bonasia (Acr.) F. .
bonasia (Acr.) Staud.
bonasia alicia (Acr.) Sharpe 3
bonasia alicia f. cabiroides (Acr.) Poult. .
bonasia alicia f. tenelloides (Acr.) Poult. .
bonasia banka (Acr.) Eltr. .
bonasia bonasia (Acr.) F. c
bonasia bonasia f. cynthius (Acr.) Drury
bonasia bonasia f. interruptana (Acr.) Strand
bonasia bonasia f. preeponina (Acr.) Staud. .
bonasia bonasia f. siabona (Acr.) Suff.
braesia (Acr.) Sharpe
braesia (Acr.) Godm.
braesia braesia (Acr ) Godm.
braesia braesia f. regalis (Acr.) Ob.
braunei (Acr.) Staud.
buschbecki (Acr.) Dewitz
bittneri (Acr.j Rog. .
buxtoni (Acr.) Butl.
buxtoni (Acr.) Hew. .
byatti (Acr.) Neave
cabira (Acr.) Hopff.
cabira (Acr.) Neave
cabira (Acr.) Wall.
cabira cabira (Acr.) Hopff.
cabira cabiraf. apecida (Acr.) Ob.
cabira cabira f. biraca (Acr.) Suff.
cabira f. abrupta(Acr.) Griinb.
cabira cabira f. karschi(Acr.) Aur. .
cabira cabira f, natalensis (Acr.) Staud.
cabira var. (Acr.) Trim.
cecilia (Acr.) Butl.
cecilia (Acr.) F.
cecilia cecilia (Acr.) F. ;
cecilia cecilia f. nuda (Acr.) Wichgr. .
cecilia f. artemisa (Acr.) Stoll
cecilia f. hypatia (Acr.) Drury
cecilia pudora (Acr.) Aur. .
cecilia pudora f, umbrina (Acr.) Aur. .
caldarena (Acr.) Hew. ane
caldarena caldarena f. neluska (Acr.) Ob.
74. LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
caldarena caldarena f. nero (Acr.) Butl.
callianthe (Act.) Feld.
callianthe alla (Act.) Jord.
callianthe amoena (Act.) Jord.
callianthe callianthe (Act.) Feld. .
callianthe rufa (Act.) Jord.
calyce (Acr.)G.&S. .
cameena (Acr.) Drury .
canutia (Act.) Hopff. .
cappadox (Acr.) Ob. .
carbonaria (Act.) Hopff.
carycina (Act.) Jord. .
cedestes (Act.) Jord.
cedestes cedestes (Act.) Jord.
cedestes suspecta (Act.) Jord. .
cephea (Acr.) Bertol. .
cephea (Acr.) Cram.
cepheus (Acr.) L. .
cepheus (Acr.) Staud .
cepheus (Acr ) Sulz.
cepheus cepheus (Acr.) L. . :
cepheus cepheus f. abdera (Acr.) Hew.
cepheus cepheus f. cepheana (Acr.) Strand
cepheus cepheus f. eginopsis (Acr.) Aur. .
cepheus cepheus f. sucepha (Acr.) Suff.
cepheus cepheus f. nigrescens (Acr.) Eltr.
cerasa (Acr.) Hew. 9
cerasa (Acr.) Gr. Smith & Kirby .
cerita (Acr.) Sharpe
cheeribula (Acr.) Ob. .
chambezi (Acr.) Neave .
chilo (Acr.) Godm.
chilo chilo (Acr.) Godm. :
chilo f. crystallina (Acr.) Gr. Smith
chilo f. hoeneli (Acr.) Holl. .
cinerea (Acr.) Neave .
cinerea alberta (Acr.) Eltr. 5
cinerea cinerea (Acr.) Neave .
circeis (Acr.) Drury .
circeis var. lycoides (Acr.) Aur. .
circeis var. subochreata (Acr.) Griinb.
clarei (Acr.) Neave
conjuncta (Acr.) Gr. Smith
conjuncta conjuncta (Acr.) Gr. Smith .
conjuncta conjuncta f. interrupta (Acr.) Eltr,
conjuncta conjuncta f. lutealba (Acr.) Eltr.
conjuncta conjuncta f. pica (Acr.) Eltr.
conjuncta conjuncta f. mutata (Acr.) Eltr.
conjuncta conjuncta f. silacea (Acr.) Eltr.
conjuncta conjuncta f. suffusa (Acr ) Eltr.
conradti (Acr.) Ob.
conradti conradti (Acr.) Ob.
conradti f. flavescens (Acr.) Blach. .
Pages.
35
10
consanguinea (Plan.) Aur. .
consanguinea albicolor (Plan.) Karsch.
consanguinea consanguinea (Plan.) Aur. .
consanguinea sartina (Plan.) Jord.
corona (Acr.) Staud. .
cydonia (Acr.) Ward .
cynthius (Acr.) Ob.
cynthia (Acr.) Trim .
cynthia (Acr.) Herbst
damii (Acr.) Voll,.
damii cuva (Acr.) Gr. Smith
damii cuva f. nidama (Acr.) Suff.
damii damii (Acr.) Voll.
dejana (Acr.) G. & S.
demonica (Act.) Hopff. .
demonica demonica (Act.) Hopff.
demonica scotosis (Act.) Jord.
demonica sobrina {Act.) Jord. .
desmiala (Act.) Jord. .
dice (Acr.) Drury .
diceus (Act.) Latr.
diceus albofasciata (Act.) Hew.
diceus amida (Act.) Hew.
diceus carica (Act.) Weym.
diceus callianira (Act.) Htibn.
diceus diceus (Act.) Latr,
diceus euris (Act.) Jord.
diceus napensis (Act.) Jord.
diceus thespias (Act.) Weym. .
diogenes (Acr.) Suff. .
dircaea (Acr.} Westw.
disjuncta (Acr.) Gr. Smith .
dissociata (Acr.) Gr Smith.
dorotheae (Plan.) Sharpe
doubledayi (Acr.) Guér..
doubledayi (Acr.) Trim.
doubledayi arabica (Acr ) Eltr. :
doubledayi doubledayi (Acr ) Guér.
doubledayi doubledayi f. candida (Acr.) Eltr.
doubledayi doubledayi f. rileyi (Acr.) Eltr.
doubledayi equatorialis (Acr.) Aur..
doubledayi sykesi (Acr.) Sharpe .
doubledayi var. (Acr.) Trim. .
egina (Acr.) Cram.
egina areca (Acr.) Mab.
egina egina (Acr.) Cram.
egina egina f. alba (Acr.) Eltr.
egina egina f. contraria (Acr.) Griinb.
egina egina f. harrisoni (Acr.) Sharpe .
egina medea (Acr.) Cram.
ehmckei (Acr.) Dewitz
Pages.
eliana (Acr.) Strand .
ella (Acr.) Eltr.
elongata (Plan.) Buil.
empusa (Acr.) Butl. .
encedon \Acr.) Lanz .
encedon (Acr.) L. .
encedon ab. (Acr ) Trim.
encedon encedon (Acr.) L.
encedon encedon f. alcippina (Acr.) Aur. .
encedon encedon f. ascrepticia (Acr.) Strand
encedon encedon f. commixta (Acr.) Poult.
encedon encedon f. daira (Acr.) G. &S.
encedon encedon f. fumosa (Acr.) Aur.
encedon encedon f. infuscata (Acr.) Staud.
encedon encedon f. lycia F.
encedon encedon f. necoda (Acr.) Hew.
encedon encedon f. radiata (Acr.} Aur.
encedon encedon f. sganzini (Acr.) Boisd.
encedonia (Acr.) L.
entalis (Plan.) Jord. .
entoria (Acr.) God.
epaea (Plan.) Cram. .
epaea epaea (Plan.) Cram. .
epaea epitellus (Acr.) Staud.
epaea homochroa (Plan.) Jord.
epaea insularis (Plan.) Aur.
epaea kivuana (Plan.) Jord.
epaea melina (Plan.) Thur.
epaea paragea (Plan.) Gr. Smith
epidica (Acr.) Ob.
epiprotea (Plan.) Butl.
eponina (Acr.) Cram.
eponina (Acr.) Staud.
eponina (Acr.) Cram.
equatoria (Act.) Bates 2
equatoria adriana (Act.) Hopff.
equatoria epiphaea (Act.) Jord.
equatoria equatoria(Act.) Bates .
€quatoria grammica (Act.) Jord. .
equatoria hahneli(Act.) Jord. .
equatoria limbata (Act.) Jord. .
equatoria lodis (Act.) Jord.
equatoria mucia (Act.) Hopff.
equatoria perfulva (Act.) Jord.
equatorialis (Acr.) Neave
equatorialis anaemia (Acr.) Eltr.
equatorialis equatorialis (Acr.) Neave .
erinome (Act.) Feld. .
erinome carabaia (Act.) Jord. .
erinome erinome (Act.) Feld. .
erinome testacea (Act.) G. &S.
eresia (Act.) Feld. .
eresia brughamea (Act ) Dyar
NYMPHALIDZ
Pages
45
13
13
eresia eresia (Act.) Feld.
eresia eresina (Act.) Hopff.
eresia leptogramma (Act.) Jord. .
esebria (Acr.) Hew.
esebria esebria (Acr.) Hew.
esebria esebria f. amphiprotea (Acr.) Butl.
esebria esebria f. ertli (Acr.) Aur.
esebria esebria f. jacksoni(Acr.) Sharpe .
esebria esebria f. kibruezia (Acr.) Strand .
esebria esebria f. metaprotea (Acr.) Butl. .
esebria esebria f. monteironis (Acr.) Butl.
esebria esebria f. nubilata (Acr.) Eltr.
esebria esebria f. protea (Acr.) Trim.
esebria esebria f. pseudoprotea (Acr.) Butl. .
esebria masaris (Acr.) Ob. .
esebria var. A (Acr.) Trim.
eugenia (Acr.) Karsch
eugenia eugenia (Acr.) Karsch
eugenia eugenia f. ochreata (Acr.) Griinb.
euryleuca (Act.) Jord.
excelsior (Acr.) Sharpe
excisa (Plan ) Butl.
felina (Acr.) Trim.
fenelos (Acr.) Aur.
fenestrata (Acr.) Trim. .
flava (Acr.) Dewitz
flavibasis (Act.) Jord.
formosa (Plan.) Butl.
fornax (Acr.) Butl.
fornax fornax (Acr.) Butl.
fornax fornax f. blachieri (Acr.) Ob.
fulva (Acr.) Doubl.
fumigata (Acr.) Honr
gaea (Plan.) Haase
gea (Acr.) Méschl,
gea (Plan.) F.
goetzi (Acr.) Thur.
griseata (Act.) Butl.
grosvenori (Acr.) Eltr.
guatemalena (Act.) Bates o8
guatemalena guatemalena(Act.) Bates .
guatemalena latior (Act.) Jord.
guatemalena veraecrucis (Act.) Jord.
guillemei (Acr.) Ob. .
guillemei (Acr.) Suff.
guillemei manca(Acr.) Thur. .
hilaris (Act.) Jord,
hova (Acr.) Boisd.
horta (Acr.) L. . Sie B
horta f. conjuncta(Acr.) Blach. .
Pages
/
Pages.
vor, lnvorsiiss, (NIE) Is > bg OO 26
humilis (Acr.) Gr. Smith & Kirby | 52
humilis (Acr.) Sharpe 23
hylonome (Act.) Doub}. . 7
hypatia var. (Acr.) Trim. 39
hy poleuca (Acr.) Trim 28
igati (Acr.) Boisd. 22
igola (Acr.) Trim. 51
igola igola (Acr.) Trim. Sicg thers eee cues mance
igola igola f. maculiventris (Acr,) Gr. Smith & Kirby. 52
igola leonina (Acr.) Beth. Bak. 49
indentata (Plan.) Butl. . 66
induna f. aestiv (Acr.) Trim. 39
insignis (Acr.) Dist. 26
insignis insignis (Acr.) Dist. 26
insignis insigiis f. siginna (Acr.) Suff. . 26
insularis (Acr.) Sharpe 58
intermedia (Acr.) Wichgr. . 35
intermissa (Plan.) Baede 64
issoria (Acr.) Hiibn. 60
iturina (Acr.) Neave . 52
iturina (Acr ) Gr. Smith 23
iturina iturina (Acr.) Gr. Smith 23
iturina kakana (Acr.) Eltr. . 23
JOGA (Aer) 185 6 6 5165 9 6 6 6 55
jodutta aethiops (Acr.) Rothsch, & Jord. 56
jodutta jodutta (Acr.) F. 2,40 55
jodutta jodutta f. carmensis (Acr.) Doubl. 56
jodutta jodutta f. castanea (Acr.) Eltr.. 56
jodutta jodutta f. dorotheae (Acr.) Sharpe. 56
jodutta jodutta f. interjecta (Acr.) Eltr. 56
jodutta jodutta f, inaureata (Acr.) Eltr. 56
jodutta jodutta f. joduttana (Acr.) Strand . 56
jodutta jodutta f. subfulva (Acr.) Eltr. 56
jodutta var. (Acr.) Eltr. . 56
johnstoni (Acr.) Butl. 57
johnstoni (Acr.) Godm, . 57
johnstoni butleri (Acr.) Aur. 57
johnstoni johnstoni (Acr.) Godm. 57
johnstoni johnstoni f. confusa (Acr.) Rog. 57
johnstoni johnstoni f. flavescens (Acr.) Ob. . 57
johnstoni johnstoni f. fulvescens (Acr.) Ob. . 58
johnstoni johnstoni f, octobalia (Acr.) Karsch 57
johnstoni johnstoni f semialbescens (Acr.) Ob.. By]
jucunda (Act.) Jord. . 12
kahra (Acr.) Gr. Smith . 30
kilimandjara (Acr.) Ob. . 57
kivuensis (Acr.) Griinb. . 29
kraka (Acr.) Aur. . 23
lactea (Acr.) Neave 31
76 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
lapitha (Act.) Staud. .
laverna (Act ) Doubl.
leontine (Act.) Weym.
leontine bulis (Act.) Jord. .
leontine catochaera (Act.) Jord. .
leontine hypsipetes (Act.) Jord.
leontine leontine (Act.,; Weym.
leopoldina (Plan.) Aur. .
leucomelas (Act.) Bates .
leucopyga (Acr.) Aur.
leucosoma (Acr.) Staud.
lia (Acr.) Mab.
liacea (Acr.) Suff. .
liberia (Acr.) Butl.
liszti (Acr.) Suff.
lofua (Acr ) Eltr.
lualabae (Acr.) Neave
lumiri (Acr.) Beth. Bak.
lumiri lumiri(Acr.) Beth Bak.
lumiri lumiri f. camerunica (Acr.) Strand .
luxi (Acr.) Rog.
lycia (Acr.) Mab. .
lycia (Acr.) Wall. .
lycia var. (Acr.) Butl.
lycia var. (Acr.) Trim.
lycoa (Acr.) Aur.
lycoa (Acr.) God. .
lycoa (Acr ) Griinb. ur:
lycoa aequalis (Acr ) Rothsch. & Jord.
lycoa bukoba (Acr.) Eltr.
lycoa entebbia (Acr.) Eltr. .
lycoa fallax (Acr ) Rog. .
lycoa kenia (Acr.) Eltr. .
lycoa lycoa (Acr.) God. .
lycoa media (Acr.) Eltr.
lycoa tirika (Acr.) Eltr. .
lycoa var. (Acr.) Butl.
lycoides (Acr.) Boisd.
lygus (Acr.) Druce
macaria (Plan.) F.
macaria hemileuca(Plan.) Jord. .
macaria macaria (Plan.) F.
macaria macarioides (Plan.) Aur.
macarista (Plan.) Sharpe
machequena (Acr.) Gr. Smith.
macrosticha (Plan ) Beth. Bak.
madhela (Aer.) Staud.
mahela (Acr.) Boisd. .
mairessei (Acr.) Aur.
mairessei mairessei (Acr.) Aur.
mairessei mairessei f. dewitzi (Acr.) Aur.
mairessei mairessei f. nyongana (Acr.) Strand .
Pages.
51
FAM.
makupa (Acr.) Gr. Smith
mamita (Act.) Burm.
mamita mamita (Act.) Burm. .
mamita mamita (Act.) Schaus .
manandaza (Acr.) Ward
mandane (Acr.) F.
manjaca (Acr.) Boisd.
manjaca (Acr.) Snellen .
manjaca (Acr.) Wall.
mansya (Acr.) Eltr.
marnois (Acr.) Rog. .
masamba (Acr.) Ward
masamba masamba (Acr.) Ward
masamba masamba f. boseae (Acr.) Saalm.
masamba masamba f. dehilis (Acr.) Ob.
masamba masamba f. silia (Acr.) Mab.
masamba masamba f. vulgaris (Acr.) Ob. .
masonala (Acr.) Ward
matuapa (Acr.) Gr Smith .
medea (Acr.) Pal. de Beauv.
melampeplos (Act.) G. &S.
melanosticta (Acr.) Sharpe .
melanoxautha(Acr.)Sharpe . .
mhondana (Acr.) Vuill. .
mima (Acr.) Neave
minima /Acr ) Holl.
mirabilis (Acr.) Butl.
mirifica (Acr.) Lathy .
moluccana (Acr.) Feld.
moluccana buruensis (Acr.) Rothsch.
moluccana dohertyi (Acr.) Holl.
moluccana meyeri (Acr.) Kirsch .
moluccana moluccana(Acr.) Feld.
moluccana parce (Acr.) Staud.
moluccana pella (Acr.) Fruhst.
momina (Act.) Jord.
murcia (Acr.) F.
mycenaea (Acr.) Hiibn. .
mystica (Acr.) Neave.
natalica (Acr.) Boisd.
natalica (Acr.) Hopff.
natalica var. (Acr.) Trim.
natalica abadima (Acr.) Ribbe
natalica var. dissociata (Acr.) Butl
natalica natalica (Acr.) Boisd.
natalica natalica f. albida(Acr.) Aur. .
natalica nataliea f mesoleuca (Acr.) Wichgr.
natalica natalica f. umbrata (Acr.) Suff.
natalica pseudegina (Acr.) Westw.
nataliensis (Acr.) Angas
nandensis (Acr.) Sharpe.
naura (Act.) Druce
NYMPHALIDZ®
21 naura chea (Act.) Druce.
19 naura naura (Act.) Druce
19 nebulosa (Acr.) Hew .
19 negra (Acr.) Feld. .
24 negra euclia (Act.) Dogn.
SI negra negra (Act.) Feld.
45 neleus (Act) Latr.
45 neobule (Acr.) Butl.
45 neobule (Acr.) Doub}.
32 neobule arabica (Acr.) Reb.
38 neobule neobule (Acr.) Doubl.
53 neobule neobule f. braesioides (Acr.) Wichgr.
53 neobule neobule f. guttata (Acr.) Wichgr.
53 neobule neobule f. sokotrana (Acr.) Reb. .
33 neobule seis (Acr.) Feisth.
53 newtoni (Acr.) Sharpe
53 niobe (Acr.) Sharpe
22 nohara (Acr.) Boisd. .
25 nohara chambezi (Acr.) Neave
30 nohara halali(Acr.) Marsch. . . .. .
16 nohara nohara (Acr.) Boisd.
50 nohara nohara f. junodi (Acr.) Ob. .
So nohara pseudatolmis (Acr.) Eltr. .
25 nohara punctellata (Acr.) Eltr,. . . .
36
42 obeira (Acr.) Hew.
41 obeira (Acr.) Trimen.
40 obeira burni (Acr.) Butl.
59 obeira obeira (Acr.) Hew. .
59 oberthuri (Acr.) Butl. :
59 oberthuri oberthuri (Acr.) Butl. .
59 oberthuri oberthuri f. confluens (Acr.) Suff. .
59 obliqua (Plan.) Aur. .
59 ombria (Acr.) Weym.
59 omrora (Acr.) Trim, .
way omrora ormora (Acr.) Trim.
26 omrora umbrata (A cr.) Wichgr.
27], oncaea (Acr.) Hopff. .
36 oncaea f. liacea (Acr.) Suff.
oncaea onca-a (Acr.) Hopff.
38 oncaea oncaea f. alboradiata (Acr.) Suff.
39 oncaea oncaea f, caoncius (Acr.) Suff.
38 oncaea oncaea f. defasciata (Acr.) Suff.
39 oncaea oncaea f. modesta (Acr.) Suff.
39 oncaea oncaea f. obscura (Acr.) Suff.
38 onerata (Acr.) Trim. . ie:
39 onerata f. umida (Acr.) Wichgr. .
39 opis (Acr.) Herbst.
39 Orcas (Aer) SIMO 5 volo io © 6 » 6
38 oreas ab. radians (Acr.) Aur. .
31 oreas f. albimaculata (Acr.) Neave .
54 oreas f. angolanus (Acr.) Drury .
10 oreas oreas (Acr.) Sharpe
78 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
orestia (Acr.) Hew.
orestia f. humilis (Acr.) Eltr. .
orestia orestia (Acr.) Hew. O
orestia orestia f. carpenteri (Acr.) Eltr.
orestia f. humilis (Acr.) Eltr. .
orestia f. moliruensis (Acr.) Strand .
orestia orestia f. transita (Acr.) Eltr.
orestina (Acr.) Plotz .
oreta (Acr.) Hew .
orina (Acr.) Eltr. .
orina (Acr.) Hew.
orina orina (Acr.) Hew. .
orina orina f. orinata (Acr.) Ob, .
orina orina f. nigroapicalis (Acr.) Aur.
orina orineta (Acr.) Eltr.
orinata (Acr.) Butl.
oscari (Acr.) Rothsch.
ozomene (Act.) God. .
ozomene cleasa (Act.) Hew.
ozomene gabrielae (Act.) Reb.
ozomene ozomene (Act.) God.
parapheles (Act.) Jord. .
Pardopsis Trimen .
parrhasia (Acr.) F.
parrhasia parrhasia (Acr.) F. .
parrhasia parrhasia f. leona (Acr.) Staud.
parrhasia parrhasia f. oppidia (Acr.) Hew.
parrhasia parrhasia f, parrhoppidia (Acr.) Staud. .
parrhasia parrhasia f. pseudoppidia (Acr.) Strand.
pasiphaé (Acr.) F.
pellenea (Act.) Hiibn.
pellenea calymna (Act.) Jord.
pellenea crucis, (Act.) Jord.
pellenea pellenea (Act.) Hiibn.
pellenea subbadia (Act.) Jord.
pellenea subhyalina (Act.) Staud.
pellenea trinitatis (Act.) Jord.
pelopeia (Acr.) Staud.
peneleos var. (Acr.) Dewitz
peneleos (Acr.) Ward OR Te
peneleos gelonica (Acr.) Rothsch. & Jord.
peneleos f. helvimaculata (Acr.) Eltr. .
peneleos pelasgius (Acr.) Gr. Smith
peneleos peneleos (Acr.) Ward cane
peneleos peneleos f. lactimaculata (Acr.) Eltr. .
peneleos peneleos f. sepia (Acr.) Eltr. .
penelope (Acr.) Staud.
penelope derubescens (Acr.) Eltr.
penelope penelope (Acr.) Staud.
penelope penelope f. argentea (Acr.) Eltr.
penelope penelope f. exalbescens (Acr.) Eltr.
penelope penelope f. penella (Acr.) Eltr. .
Pages.
52
penelope penelope f. sulphurescens (Acr.) Aur.
penelope translucida (Acr.) Eltr.
penelope vitrea (Acr.) Eltr.
pentapolis (Acr.) Ward .
pentapolis epidica (Acr.) Ob. .
pentapolis pentapolis (Acr.) Ward .
percussa (Acr.) Kef. .
perenna (Acr.) Doubl.
perenna thespris (Acr.) Ob.
perenna kaffana (Acr.) Rothsch, .
perenna perenna (Acr.) Doubl.
perenna perenna f. usagara (Acr.) Strand
periphanes (Acr.) Ob. 0
periphanes f. beni (Acr.) Beth. Bak.
periphanes f. marginata (Acr.) Eltr.
periphanes f. acritoides (Acr.) Eltr.
periphanes periphanes (Acr.) Ob.
periphanes (Acr.) Neave A 4
periphanes f. umida (Acr.) Wichgr.
periphanes f. melaina (Acr.) Eltr.
perisa (Act.) Jord.
perrupta (Acr.) Butl.
persephone (Acr.) F.
pervia (Acr.) Sharpe .
petrina (Acr.) Suff.
petraea (Acr.) Boisd.
petraea petraea (Acr.) Boisd. . 5 are g
petraea petraea f. pseudacontias (Acr.) Wichgr.
petraea petraea f. rohlfsi (Acr.) Suff.
petraea petraea f. taborana (Acr.) Suff.
pharsalus (Acr.) Ward .
pharsalus pharsalus (Acr.) Ward.
pharsalus pharsalus f. pallidepicta (Acr.) Strand .
pharsalus pharsalus f. pharsaloides (Acr.) Holl.
pharsalus pharsalus f. nia (Acr.) Strand
pharsalus rhodina (Acr.) Rothsch.
pharsalus vuilloti (Acr.) Mab. .
pheusaca (Acr.) Suff. .
piva (Acr.) Guen. .
Planema Doubl.
planesium (Acr.) Ob.
poggei (Plan.) Dewitz pees eave es
poggei nelsoni (Plan.) Gr. Smith & Kirb.
poggei poggei (Plan ) Dewitz.
pollonia (Acr.) G. &S.
polychroma (Acr.) Reb.
polydectes (Acr.) Ward.
pomponia (Acr.) Gr. Smith.
protea var. B. (Acr.) Trim.
proteina (Acr.) Ob. ,
protenia semifulvescens (Acr.) Ob. .
pseudeuryta (Plan.)G. &S
pseudolycia (Acr ) Butl.
Pages.
FAM.
Pages.
pseudolycia pseudolycia (Acr.) Butl. 29
pseudolycia pseudolycia f. astrigera (Acr.) Butl. 29
pseudolycia pseudolycia f. brunnea (Acr.) Eltr. 34
pseudolycia pseudolycia f. emini (Acr.) Weym. 29
pseudopelasgius (Acr.) Strand 48
pudorella (Acr.) Aur. 35
pudorella detecta (Acr.) Neave 35
pudorella pudorella (Acr.) Aur. 35
pullula (Acr.) Griinb. 44
punctatissima (Pard.) Boisd. . 71
pyrrha (Acr.) Fabr. 18
quadra (Act.) Schaus . 18
quadricolor(Plan.) Rog. . .. . 64
quadricolor itumbana (Plan.) Jord. . 64
quadricolor latifasciata (Plan.) Sharpe . 64
quadricolor leptis (P an.) Jord. 64
quadricolor quadricolor (Plan.) Rog. 64
quirina (Acr.)F. .- . . . 23
quirina quirina (Acr.) F. 23
quirina rosa (Acr.) Eltr. 24
quirinalis (Acr.) Gr. Smith. 52
rabbaiae (Acr ) Ward 5 21
rabbaiae mombasae (Acr.) Gr. Smith 21
rabbaiae rabbaiae (Acr.) Ward 21
radiata (Act.) Hew. 6
radiata intensa (Act.) Jord. 6
radiata radiata (Act.) Hew. 6
rahira (Acr.) Boisd. 40
ranavalona (Acr.) Boisd. e 24
ranavalona ranavalona (Acr.) Boisd. 24
ranavalona ranavalona f. manandaza(Acr.) Ward . 24
ranavalona ranavalona f, maransetra (Acr.) Ward . 24
recaldana (Acr.) Suff. 35
rhodesiana (Acr.) Wichgr. . 36
rogersi (Acr.) Hew. 24
rogersi lamborni (Acr.) Eltr. - 24
rogersi rogersi (Acr.) Hew. ere 24
rogersi rogersi f. salambo (Acr.) Gr. Smith 24
rosina (Acr.) Rog.. 27
rudolphina (Acr.) Herbst 29
rupicola (Acr.) Schultze 44
riippeli (Acr.) Saalm. 53
safie (Acr.) Feld. 53
safie safie (Acr.) Feld. 53
safie safie f. antinorii (Acr.) Ob. 54
saluspha (Acr.) Suff. . 47
sambavae (Acr.) Ward 52
saronis (Acr.) Hiibn. 30
satis (Acr.) Ward . 21
scalivittata (Plan.) Butl. 63
NYMPHALIDA
schubotzi (Plan.) Griinb.
segesta (Act.) Weym.
semivitrea (Acr.) Aur.
serena (Acr.) F.
serena (Acr.) Herbst
serena (Acr.) Mab.
serena (Acr.) Trim.
servona (Acr.) Aur.
servona (Acr.) God.
servona limonata(Acr.) Eltr. .
servona orientis (Acr.) Aur. .
servona orientis f. depunctella (Acr.) Strand .
servona orientis f. unipunctella (Acr.) Strand
servona orientis f. semipunctella (Acr.) Strand .
servona orientis f. transienda (Acr.) Strand
servona rhodina (Acr.) Rothsch. & Jord...
servona servona (Acr.) God.
servona servona f. reversa (Acr.) Eltr. .
servona servona f. rubra (Acr.) Eltr.
servona tenebrosa (Acr.) Eltr.
sganzini (Acr.) Boisd.
silia (Acr.) Eltr.
siliana(Acr.) Ob. .
siliana siliana (Acr.) Ob.
siliana siliaan f. concolor (Acr.) Ob.
siliana siliana f. antekara (Acr.) Ob.
silvicola(Acr.) Rich. .
smithii (Acr.) Mab.
sordice (Acr.) Fruhst.
sotikensis (Acr.) Heron .
sotikensis (Acr.) Sharpe .
sotikensis (Acr.) Neave .
sotikensis rowena (Acr.) Eltr. .
sotikensis sotikensis (Acr.) Sharpe
sotikensis sotikensis f. hansmegeri(Acr.) Strand
sotikensis sotikensisf. katana (Acr.) Eltr. .
sotikensis sotikensis f, rowenina (Acr.) Gaede
sotikensis sotikensis f. supponina (Acr.) Staud. .
stenobea (Acr.) Wallengr. .
stratonice (Act.) Latr.
stratonice dereta (Act.) Jord.
stratonice acipha (Act.) Hew. .
stratonice diversa (Act.) Jord.
stratonice marthae (Act.) Jord.
stratonice meridana (Act.) Jord. .
stratonice stratonice (Act.) Latr..
strattipocles (Acr.) Ob.
strattipocles strattipocles (Acr.) Ob.
strattipocles strattipocles f. albescens (Acr.) Ob.
strattipocles strattipocles f. cervina (Acr.) Ob. .
surima (Act.) Schaus.
telekiana (Plan.) Rog.
80 LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Pages.
tellus (Plan.) Aur. . 63
tellus eumelis (Plan.) Jord.. 63
tellus tellus (Plan.) Aur.. 63
tenebrosa (Act.) Hew. II
terpsichore (Act.) Cram. . 60
terpsichore (Acr.) L. . sued 45
terpsichore ochrascens (Acr.) Sharpe 46
terpsichore rangatana (Acr.) Eltr. 46
terpsichore terpsichore (Acr.) L.. 45
terpsichore terpsichore f. connexa (Acr.) Thur.. 45
terpsichore terpsichore f. contraria (Acr ) Strand 46
terpsichore terpsichore f. intermediana (Acr.) Strand 45
terpsichore terpsichore f. janisca (Acr.) God. 45
terpsichore terpsichore f. janiscella (Acr.) Strand . 46
terpsichore terpsichore f. melas (Acr.) Ob. 45
terpsichore terpsichore f. rougeti (Acr.) Gueér. 45
terpsichore terpsichore f. subserena (Acr.) Gr.Smith. 45
terpsichore terpsichore f. toka (Acr.) Strand 46
terpsichore terpsichore f. ventura (Acr.) Hew. 45
terpsichore terpsichore f. venturina (Acr.) Thur. 45
terpsichore var. bukoba (Acr.) Weym. . 45
terpsinoé (Act.) Feld. . 16
terpsinoé crassinia (Act.) Hopf. 16
terpsinoé eupelia (Act.) Jord. . 16
terpsinoé terpsinoé (Act.) Feld. 16
tescea (Acr.) Suff. . 27
thalia (Act.) L.. 15
thelestis (Acr.) Ob. 22
toruna (Acr.) Gr. Smith . 58
trinacria (Act.) Feld. . II
tropicalis (Acr.) Blach. 48
turna (Acr.) Mab. . 29
turna turna (Acr.) Mab. . AR te erin 29
turna turna f. marmorata (Acr.) Gr. Smith & Kirb.... 29
usagarae (Acr.) Vuill. 41
umbra (Plan.) Drury . 67
unimaculata (Acr.) Gr. Smith . 23
uvui (Acr.) Gr. Smith, 42
uvui balina (Acr.) Karsch 42
uvui uvui (Acr.) Gr. Smith. 42
uvui uvui interruptella (Acr.) Strand 42
ventura (Acr.) Butl. 46
vesperalis (Acr.) Gr. Smith. 22
vesperalis catori (Acr.) Beth. Bak. 22
vesperalis vesperalis (Acr.)Gr.Smith. . . . . 22
vesperalis vesperalis f. punctata (Acr.) Strand 22
WES (AGE) IP, G6 6 6 15,0 6 oO 6 6 60
vesta (Acr.) Horsf. 60
vesta (Acr.) Snellen 60
vesta f. vestalina (Acr.) Fruhst.
vesta vesta (Acr.) F. .
vesta vestita (Acr.) Nicév. Oo. 80
vesta vestita f. alticola (Acr.) Fruhst.
vesta formosina (Acr.) Fruhst.
vesta narona (Acr.) Fruhst.
vesta narona f. arsa (Acr.) Fruhst. .
vesta vestoides (Acr.) Moore
vestalis (Plan.) Feld. .
vestalis vestalis (Plan.) Feld. .
vestalis stavelia (Plan.) Suff.
vinidia f. ruandae (Acr.) Griinb. .
violae (Acr.) F..
violarum (Acr.) Boisd.
violarum omrora (Acr.) Neave.
violarum umbrata (Acr.) Wichgr.
viviana (Acr.) Staud. .
welwitschii (Acr.) Neave.
welwitschii (Acr,) Rog. . :
welwitschii alboradiata (Acr.) Aur. .
welwitschii lobemba (Acr.) Eltr.
welwitschii welwitschii (Acr.) Rog.
wigginsi (Acr.) Neave
wissmanni (Acr.) Weym.
zaire (Acr.) Rog.
zambesina (Acr.) Aur.
zetesi(Aicr)) eu.
zetes acara (Acr ) Hew. .
zetes acara f. caffra (Acr.) Feld. .
zetes acara f. mhondana (Acr.) Suff.
zetes barberi aberr. trimeni (Acr.) Aur.
zetes barberi (Acr.) Trim. .
zetes sidamona (Acr.) Rothsch. & Jord.
zetes var. acara (Acr.) Pagenst.
zetes zetes (Acr.) L. 5
zetes zetes f. menippe (Acr.) Drury.
zetes zetes f. jalema (Acr.) God. .
zethes (Acr.) God. .
zethes (Acr.) Staud.
zidora (Acr.) God. .
zitja (Acr.) Boisd. .
zitja (Acr.) Mab.
zitja zitja (Acr.) Boisd. .
zitja zitja f. calida (Acr.) Butl.
zitja zitja f. fumida (Acr.) Mab.
zitja zitja f. rakeli (Acr.) Boisd. .
zitja zitja f. radiata (Acr.) Guen.
zonata (Acr.) Hew.
zonata zonata (Acr.) Hew. .
Pages.
I.
2
3
4
FAM. HISTERIDZ 81
EXPLANATION OF PLATES
PLATES I
Acraea terpsichore ochrasceus Sharpe.
. Acraea althoffi pseudepaea Dudgeon.
. Acraea admatha admatha forma leucographa Ribbe.
. Acraea anacreon anacreontica Grose Smith.
5. Acraea rogerst lamborni Eltringham.
Io
. Acraea axina Westwood.
. Acraea mirifica Lathy.
Acraea welwischtt alborvadiata Aurivillius.
. Acraea conjuncta conjuncta forma lutealba Eltringham.
a, 10b. Wing neuration of Acraea.
— 11. Acraea neobula Doubleday.
— 12a. Claws of Acraea hova Boisduval.
Fig.
12d. — Acraea parrhasia Fabricius.
PLATE 2
1. Planema epaea homochroa Jordan.
2. Planema pseudeuryta Godman & Salvin.
3. Planema entalis Jordan.
4. Actinote thalia Linnaeus.
5. Actinote hilarts Jordan.
6. Actinote momina Jordan.
7. Actinote diceus albofasciatia Hewitson.
8. Actinote surima Schaus.
9. = ae ae
10. Actinote diceus albofasciata Hewitson.
11. Actinote euryleuca Jordan.
12. Actinote radiata intensa Jordan.
13. Actinote alctone savsanda Druce.
14. Genital armatures of Planema macarista Sharpe.
sia) a= Planema excisa Butler.
16. - Planema pseudeuryta Godman & Salvin.
Tring (England) 15th July 1916.
LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
GENERA INSECTORUM
m anacreoniica Gr-Sm. ©
A. mirifica Lathy: 3
A, neobule Doubl. 3
AL. conguncla f. lutealba Eilts: 9
we | | pb \\\\)
4 | \
ae cs Nae
J — \\ | \ /
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— /} { Zz
\Omey a
Hy \
Acraea Wing Neuration u ; Acraea Wing Neuration
hova. parrhasta
FAM. NYMPHALID&..
SUBFAM. ACRAEINA.
1
GENERA INSECTORUM LEPIDOPTERA RHOPALOCERA
Actinote momina
Planema pseudeurvila
y
Actinole surima 3d
Planema cpaea homochroa ©
Achnote albotasciata zo)
Planema entalis
Aclinole sarsunda
NABAGD PRE: Actinote euryleuca
we th
im a — .
— 4 SSS 16
\ / ENS aa
- \ 7
he re! \ “hoa \
~~ \ ae
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| } \\ |
f, \ |
J | \ |
7 |
a \ }
‘ y \
\ — |
we
Planema tmacarista Planema excisa Planema pseudeuryta
FAM. NYMPHALIDE.
SUBFAM. ACRAEINA
2
a
oy, AN
Mette: Reve
hive
Usui
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