DE rer
LELTER DL TUT rare
TINTE
nl
3 ne rem
a Dar
neunten,
ET NN «
RE rnENEmMe Rene
KLEE
Mm unnnnelansitng.
nr
LETZT
Dann nenn
una ara vw
UI AN N,
org
MIN AUNKA ARENENE KuHAL nenn
ALTE Anne
\
rnnanman
urn
Armanm
WR nenn
name
Amor un naar,
ar wann ra utn Ai
Drum nnuneae
waren Wann
ELDEureee
mn teumnn,
nur
BEREITETE M Ana hhrae
Fun er mus
\
ELEEUEETEET
BEE LIELET
nina
lrshalman
Mana
rt hmnın
EELEDEITTErETET
DILBEEL TER EETERE
BEL EI 2072
LIE BER er Per
BL EITETTETT v
Womsnımam,
uasnenamlen
arrtann
anranen
IRLLELTIIEID SEITE
Koh LLE LEN ZIEL SEITEN
LEITEE Er ee
BEIPE RER Te
an an anhnn hohem.
ram gnan
Vu m.
u > = A = 7 An - N m AP, 7 er G Fi m se E
u EZ N
e RN se > =
JTION NOILNLILSNI NVINOSHLIWS" S3 IUVygıı LIBRARI ES SMITHSONIAN INSTITUTIKC
LIBRARIES
SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NYINOSHLINS S31UV48
LIBRARIES
NOLLNLILSNI
LIBRARIES
NOTLNLILSNI
all LIBRARIES
INSTITUTION NOILNLILSNI
rm m = gr z
[es "© oO on oO
>) en) Er » r
> > r ru e
zo De — ee) a
—_ _ + Be nn
m m 2 m 2)
(75) o = 177) -
JTION ._NOILNLILSNI NVINOSHLIWS S31IUVWYHI1 LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTI
2) = on zZ s: wo = A
R z < = „< N Z z x _
5 4 2 =) 2: N SR zZ S
N == h oO =: “, Io) x RUE = = oO ö
oO == oO 3 T. g oO er
> z = < > z
> z = > = > =
- z 77) > [77) ” = 7} »
Yg1ı7 _ LIBRARIES SMITHSONIAN _ INSTITUTION NOILNLILSNI NYVINOSHLINS S31IYVY48
z e = nn 3 U
142} Be „0 = 172) ‘ Ri ui
= ©. = X ZaNN ı
— ” —
S & z 5 z =
5 279 ° > e) e
= = z = z 3 =
ITION _NOILNLILSNI_NVINOSHLINS_ S31I4VY48171 LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTI
2 BER = > z f 2
_ se) _ je) — gs =
Br 2 > 2 r m, 2
- E = > WE
>= = = ee m, e-
z en gi 3 5
LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLINS S31 uvyg
= . Q zZ « 17) zZ 12] 2
* _ x = =
an SR 02 |: 177) OR 77) =, [02
= " > IN O == . N oO "x oO
= N NS £ r N N 2, = =
er S > n —_— # — — ,
= W > ER BE z =
TION NOILNLILSNI_NVINOSHLINS S31 Yvu g11_ LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTIC
S
x
N
LIBRARIES
LIBRARIES
NOILNLILSNI
EN
NOILNLILSNI
NOILNLILSNI
J917 LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NYVINOSHLINS S31IUYN
172)
wu
x
<
X
an.
3
Sn = r z r
> =) N e) = 5
bi oo —
e) = e) 2a - ang
> ! > > =
r = -
7,) — 77) >
* z m z = z
ITION _NOILNLILSNI S3IYUVYEIT LIBRARIES SMITHSONIAN
[77) a [07 = - “N Ze
' z Z 23 ‚„< \ Z =
. 4 = 3 FE N I zZ
77) 7) 77) 72) > m)
\\ oO u sr = N oO Ar
y = = zZ = N 2 =
e> = > = > =
v4 172) =z 177) ” oa 17)
4817 LIBRARIES SMITHSONIAN _ INSTITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLIWS FIRTIT:
zZ
1 MSON HSON
5% 147) & 14 st 14 HSWA
Bi - SET SETIP>D\ —- Far
+EB
ES
Sy
ui ua
\SNI
7
A
IES
>
ISNI
7 2 *
“ 2
“
\
>
N
3
Be RBB FF =... NN 2,74 5/77: A Se Se
ser SS
NLILSNI _ NVINOSHLIWS S314Y49171 LIBRARIES SMITHSONIAN er OILNLI
z e z 2 z a
107) Er [477 177) 3
= x = x =, x
EZ. < = < 4 <
ES = 3 = 3 =
ZN ze fe) 2: fe) =
\ — = 23 = a
RAR IES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLINS S31UVYN91I LIBRAI
R. z E z K z E
EB Pr Fe je») = I
= - = >) > Pe]
= 5 = a E =
> = = = = au
ee nos” = B ne z
NLILSNI_ NVINOSHLIWS S3 IUvVug I LI BRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION _NOILNL
| .< = NE zu. =
ö zZ Su > z u
2 o; Q RR >08 = >
E = EN, 2 : -
= > = > = >
E: [77) z (7) = Ps 77 =: == ;
ARI ES_SMITHSONIAN _ INSTITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLINS S31YVWY917 LIBRAF
== = en (07) 3
wu 7 u ® 1
= .4 = 3 N = =
<: E < ES 5: :
5 = = u vr =
= # [s) = [e) ea fe)
2 = _ = ia = =
NVINOSHLINS_S3I4VY83917 LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLI
= * = BE = & e
[es] ei ler} u TE oo =
- = : 5 2 5
m m SF ER =
> = > E, DK >
m 2 - un’ m 2)
7) = 7 z 7 zZ
INSTITUTION NOILNLILSNI NYINOSHLIWS SIJIYNYYgI7 LIBRAR
Q Zi (7) zZ (02) & z .
S En = < = NE
= = = = = > „>
ı 2
NS = = Ep = = = N
IN > =. > = ;
NLILSNI_NVINOSHLUINS BE BRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION el
° E 7 wu = u
5 = = = = =
; < ;
= or = X = [04
o 0 = fan 5 [00}
= ° = [e) _
= 22 7 er == —_
ARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLINS S3IUVY4A17 LIBRAF
re z = er
= (©) oO =>
= = Er Er
Ey = = >
> mel -—.
= = 7 =
2 E z a
NLILSNI S31IYVY911 LIBRARIES
INSTITUTION _NOILNLI
NVINOSHLINS S31I4VY817
NVINOSHLINS S314VY917
SMITHSONIAN
SMITHSONIAN
FB
+
NVINOSHLIWS
Rs
&
SMITHSONIAN
LIBRAF
BE
I ETR7
NOILNLILSNI NVINOSHLIWS S31IYYY917
ARIES SMITHSONIAN INSTITUTION
ASON, SEEN
4 N 4
EIN DD
ES
LSNI
IES
LSNI
ES
LSNI
*
N 2°
iS, Y ’
y Zn 2 N
"TARE AG I
Yo UHRR | Be
+W L. . ve u PR j yo AR, ‚It
ur Sa ;. w/) Firäk .
a Kr RAD ka
TU DER, | ER ka
4 xt ‚ F 12 ° “ er er N
Pe zung en ARE A ver
2 = Moe R ü ‚ h 4
Wr =. \ | Ale 7
=. » ! j
2 “l ER SEN
ng u‘
#
ANDBUCH DER OOLOGIE
2 HERAUSGEGEBEN UND ERGÄNZT VON | a,
2 Prof. Dr. WILHELM MEISE Bi
Zoologisches Institut und Zoologisches Museum Hamburg i =
re eg Lieferung 37 : ES
|
Fr /
- r - i
Vera
; E : EN Y-
Ä 5 t “ ; Ei
Er 2
AKADEMIE-VERLAG - BERLIN er
a : j 1983 y (a . , ; 53
} .
Familie Sturnidae . . % :
Familie Oriolidae .
„Eamilie Dienisitlae ae ee a N
3 ;
. . e r
x WIE ;
2 iR 6
7 =. 1 % ; x :
Ed
e y }
1
Erschienen i im Akademis- Verlag, DDR- 1086 Berlin, Leipziger Straße
© Akademie-Verlag Berlin 1983 IK Fi ’*
R er Lizenznummer: 202 . 100/491/83 h
Printed in the German Democratic Rewabhe
Genen: VEB Druckhaus „Maxim Gorki“, 7400 Altenburg:
LSV 1365
Bestellnummer: 163.028 8 Bl
' 01400
he
>
L>
1)
Ploceidae
Passeriformes
(nıbpnist =)
vyıluBdurg-N 'n epuuan
sIg uorussogqy-g “uBpng-gg !sısuann
8999 Jloqıy SOp
(1999 MUuoyag !suoayag]
1007 "AON “LALLUVd
" NUONMUHOLN ‘16 '8
“gP'S "TE
\DIugf LVO)
:P261
"saw
‘LOG HEDNVIUSE "A °78'8 ‘GO6L —-FO6I
MONAHDIT EEE’ ‘C68T TTIHOSAN)
3 6170-810 = 1F1 0/81 X 018981
("wnoN)
Opump-N 'n uepng sıq [edouog :snumppa | %r'8 061 207°0 | 0910 g‘eJ 261 sısuonn "n (‘YyaLT) snanpma snyppaa sna90)T %E
(ıpunaf)
n epuenygg Z/o g :ojjlAuouamog] op) (0861 wong ULIANOSRRDG ma yaru (J
(wıbopg = !sw.uoyunydhrf =) INVWLIT Saw "Liag "LVO !NUONUHLN)
UBPNS-OS WEISIOHKNE 'n uorumssogqy-g (IXOL, Sypdıs) 8’ST—-B'EL X L’EZ—-0'03
Bıewog sıq Saez-ON 'n eyıluedur]-N _ 1P'z _ — ‘HJ LIZ jpddnyy snıpaw.ogur en sn] Of
(0161
SUnvf :87P 'S ‘1967 Swuasoy E98 '8
‘OF6I HINNVEHLAIN 9 HOSAOH :F76T 9 °S
g/o :syaogoyy] “p°oN ‘F O9 [OO "UaH9Tag :C06L ‘87T 'S
(nıbongt =) ‘gT [00 'Z ‘zSyavav ‘C68T TAHOsay)
puepnpng 'n jewasueag, sıq eyıluedurg, 2 sro -Fr'o = S'SI FELIX 47a 8'81
Sn Buy MS-MN (epoduy-Ms) | %s'9 | Fr | 0600 | one | Zi r17 (saoJo4) MUsaungnd snıpoumogur sna9o)T 09
(mıßongs' =) (‘FOR 'S ‘LOGT Yanınvauy 'A)
U9TUISsSs9gVY S9ISYDIPNS 8 830-080 = 09T 0 FI XI E61
‘Bpund N-N SuBz-ON FOg8aorme “urpng-Q %86 0% Kali) a) epl 10% 'qyay sndoJdoruan] sn.ıuaydoruan] ENT 8
(GBFT 'S
‘967 NVmaod 9 uumHouv :ppg'S ‘9861
SIQT ‘STLVg SAW "wIagg "Lv °NUON
[#—2) g/9 :uewpon X aoyoıay] -UHSEN °2067 YHONVaap "A yoRu dos 98)
eıeBwog-ON SIq S “uorgquay 3 067'0—9£1'0 = Z'II -gE1 X #73 4'871
ur gneueape- M Stq uepng ur In aogoM | %g'L r1'7 960°0 gg9r‘o 01 9'083 loddny »pngmb snaao)d 39
(epuwsn) z/T :1osnoayy !oggagum g/g (0867 "PL1A
:o9][LAuOUINOgL Op :g UoyJos‘z/a :uosyoRf) ‘ONAIHYAL Yoeu Z ‘UTTANONANOT 9P
(snuogdoyyguny = !nıbops =) yoeu pP ©'sap “Liag] "LVO !NHOMMHAN)
N ypwu nAry UoA ourez Soysydı] (HxoL 9yoLs) 3 110 97°0 = 0987 -6°87 X9° TE 8'817
79 "eyrlusdung- MN “wpueng “wpurdn | %6‘L | 887 | ror‘o | s9T‘0 a: ‘07 Koyjoyg sdoungsmo sna9077 O1
4 | 8 P So VW
37 Oologie, 37. Lieferung
(L61 'Z22 'S ‘FIT SIqI ‘vımoadıA)
[989 AuB101]0 A er 877 ” i>3 LPT | 97% (8.85 '8961) SIT -TEIX0IG-G'8T PRZ
[989AUuBA101]0 A ee [6.204 sid .u ei 2 917 (6 98 ‘LIGT) HT —L'ZI XH'ES-E'8T F6E
(1919PMUuoyagS !suaayagg SE 'S OP6I
stgp "TTS :699 'S ‘E67 SIqT "Trans
N NIvaunop !69F'S ‘zZ£6T SIqT “moi
[qnepgpaepy sngsopow = -NOLHBNOT GP 'S 6067 SıqT "suuvg
(ww) “ogcay = !wabnpsorsanf =] "SON LIU] "LV/) !NMOMUHEN !TICHOSAN)
eg :Iodangadur :9woL OUS 3 980-9710 = 0°LI-0°F1X 093-017
‘og opweusg ruyy-wurgn sıq mdsuog | %r'9 60°€ 060°0 |! F61'0 8‘gT L'EZ (aan) snimymano snywynona sn»907.J £9
(0861
(wızwog p/o !wruoyg g/O "[JPlIq ONATHML "N MTTIANONUNOF Ha
:199nor,7] Suruoyg Z/> :ojjlauoummog] op) ypru z 'Mmzqg 96] NYmaor X YIHDUY)
uyılund 3 18°0—61‘0 = T'IL-Y FIX 89T 0'373
op URLON “wluoy “erewog ‘uorumsogy-g NEL 00€ E0TO 338 0 L’SI 0'E7 (uno) 2oyads Sna9o]J x +6
= (0L67 SAnvp !ssp 'S
a (F-z/9 :sowwp) ‘6P6] ENHONIA 707 'S *pI6I aa)
2 (nabppg = !srusogunydiirf =) saw '"LIug] "IVO !TaHosayy “auvavı)
” [PRASURLL-M | 3980 81°0 = E'LI- 471 X 99a — 061
2 n pungdesp- AS aoepne eyrapepng | %g'8 r9'7 (to || Elke) 671 r'7% ('quy)) suofıbru snnJoa SN9907.I 89%
[uorsopoyyq-S (p—z)g/P :sownp]
L(edamyg) hoppys = sag snypd (815 'S '0L61 'SUnVP
-DAMD — !("yDanEL) Sna9nupunın = :68# '°S 646] LNAONIA 06] AAINWVH
Suppruug 2pngoyoy "Tyasur !nıbnpgt = | -LOIEIN 9 HOSAOH :PZ6L '8'S FF VOM 100
purdeyp- MN "BYLIV- MS “USCHOTAEL *'SAW "LIug] "LVO !NUOMUHSN)
“BURASIO erasunıf- M Pnbriqumson 8 223°0- 810 = 09T —-0'31 X FF — 11
sIq B[oguy-g ‘uorsopoyyp-N “purjessun. | %6'8 21'‘z F0T'0 | 9:70 0'F] E07 yopjpıA snmpoa snywpaa snd907] GPI
(nıbpnst =) (LP 'S ‘IZ6T PIZNAAN !NYUOMUHAN yovu)
vytluavdurf- MS ur vayny sıq wwoawy —_ 00% — — 071 p°6] "Ayo ?pımyaVaı snDppa sSna90]T %
(0867 'PLIq 'OQALHMTT,
(erewog g/T !eruoyg z/T :aodnouyy n STTIANONANOE aa ypru g 'Aazq £)
ERTUON SONLUORN e/o :OJJTAUOU.IMOET OP) 3 670-910 = 0°FT -FEIX0°TZ-6'61
UOULIOT OBTIoA oyors | %p's 90°% 010 | ELr'0 sel E07 (uuwwnoNn) sısuonn sny»pa Sna90L] 8
3a 9 P 8 ad V
578
Ploceidae
Passeriformes
(punan z/7 !epursn T/T :198n9ayT)
(vhıgdounpnf =)
eyıluwsun-M "mn BrUosp- M
stq (OS WOISAOKNR doKnR) oamz ypanp
"n UBPNS-HS SIq Bosuy-N "N BLIOSIN-O
(viısgdownumg =) WAOT uogsypru
nz Suvdaogn) OM RLESIN-O Sg BLIogrT
(z- 1/9) 9wos, ou
(g/o aounum 9su7J :8910g0 4)
(nıbonst =)
uorunogyy
SNIILINBTA :OS.AMGESUT !purjdesg
-O sıq -& Tewasumay-o 'n onbrqwwdson-s
I(e)a/> :oypjogr]
(svutogunydhr; = !wıbnmst =)
DURZ-OS “UOILRop
-oygp-S 'n -N ‘onbrqwwson Ssıq erfewog-g
(nanın z/7 !rpursn T/T :odnoayy wang
-wnsn £/> 81 :7/2 1% :P]AuoUMmOo—gL Op)
— — ayılurdunrg, uoA gorg
-9H sPpuszuaasur 'n Ipunay wpurny
(sruogunydhrz = wıbong' —)
UOTUISSOAY
(vqgayusy z/T :19dnoAayy)
(gun 50)
snunummaf "[yasum !sauwsorunydkrf = |
eyluwsurg- MN epursn “urpng Banz-N
(epuenTg
g/ !useysungg /d yoruyoMmos)
(40980, 7, =)
SRZ-M SIq Bfosuy-N 'n ungen
%99 LEE | 9600 | 9350 &'9] 77
99 | ezE | 9600 | STzo 1'917 8'67
(uOgOLIYOSOA OHREN PUuyo SUHLTOM N SIOHAVN 199)
(0867 "orig ‘onATHaTT, yoru g
35 8 "7167 NIDODIUT ypru zZ wen)
2 080-610 = ELT-LFTX 093-013
"A Smunaobru swundsobvu SN9NT Er
3 980-610 = ELI- IT X VIE — 0'77
UOSSOrJ snosn[ooum]smd snunabvu SNaJo]T (071
(Anın)) sopunab Sna9o]L
(089 'S
‘96, STumaoyg aan saw waugf
"LVO, °NMOMMHEN SIaHosas]f FauvavT)
3980-970 = 011-091 X 793 9'617
SIOOLA SNJOHOMÄS SnInymand snd907.T Fr]
(19999MUOYOS !su9ayyagf FLNMONIA
Gp6T NOSNAT :ZIE'S "0861 CHOMIE
San wiugg "LVO tHosı,p/TsHosasg)
3 93.0810 = E'IT -8'71 X 0'958 —9°T7
(paeAvrg) sdoonubru sngnyjnond Sna90].T X
(0867 "TJPTaq ‘ONATHAMT,
“SITTIANONUNOFT MA yowu 96)
3080-110 = (SINZIT - TFT X
(1‘98—-) 98 —0'37(--6°0%7)
au] WionDıb snpypnond Sna907T
(8 9 106] UMDNVAaHS "A yoru 77)
3 093°0-FL1'0 = 691-097 X 077-017
("wH) snowmsshon snynymmond sn90o]T 8%
(0861 'pLıq ‘onATHAUTT yaru Z
‘T161 INIDODHINT 878 '9 “PG6I Navy
‘zZIBL 'S ‘SET ANmnvag 9 NOSMDVL)
8680-860 = YIT—-TFIXZL3—-L'TG
"Ayoy 2//Ssopuyog snguyppond snaao]T X + Gh
97
peu 9
01
[0261
‘ET’ ‘T (Bpueng) [org serauor) ‘SOLNVS x
‘soq "ug !NIavag] 097-091 X0'98 4'375 +
YOJJIOTA 8%.197]09 Snnypnona Sn T 6
HEL.| 66% | 0010 | 81z‘o | cr g'ez
HeL | 28% | 0070 | 202°0 1‘9] [‘E3
Kr | 98% | 880°0 | 98T‘o 37 #'EZ
Kr | 008 | 0070 | Sız‘o | 871 837
He | ze 7600 | Sao | 001 97%
>= r0°% z F ger | BEZ
Sy 9) p 3 <ı
37*
(snaoogdounppr =)
29. Ordnung
vpoduy-g sıq samz-ON 'n vpundn - ze —- _ oo >| 0ER» "Ayoy s2mpndposaoyun Oo. Sn] —
(998 odunmg F—g/d :uosyporp)
(mußong =) (LS ‘LOGT YHDNVIAGE "A yowu dort 67)
vyılurdung-N-[eayuoz wpuudn] 3 080-870 = GI1 - EFT X 087-907
-ON Sg wwwog 'n woagLıg] "URpng-OS 06% zıro | 08280 80] 817 jpddny snsourdrgn« snsounbrgnd SNOLT TE
(wuuog g— 7/2) (NEISTUAWMOS NVA-WNVHDNINNN/))
UrpnS-O = CT A _ DOT» 05m (uıssuj)) snıpng snıpng Sna9o]T -
(OP KUOyDS !61T 'S 'PE6I
K(g-—)z/o :uossyprp] SNAT sap "wiagf Savp) INNOMUHEN
(seusoyunpydkrf = !nabnns=) ‘SI 'S ‘0 '7O 'Z ‘zsyuvavı)
vyılund 3 98°0—81°0 = FIT -0'FT X 877 —€'61
URL MN nn Buy MA wpurdn unpng-s | %06'8 IE sır0 | 0180 gr 808 Kooyg zuosyonl snoT OF
(z/? yaıuyomeod :uossyprp) (1919PMUOyag !sundtogt !8Tz 'S ‘OL6]
|(nopwapıg X Laourguy) snwıp SOLNV P SUERLVIOS D NOSNDV LP !NUONUHON)
up yonv Yoryospty NUONUHUEN 104] 8 73°0—L1‘0 = 0/91 -T'ET X 0'E8 9'671
veyrluwdurp-N 'n vruoy wpurdn | %4'6 Pdrdlrd 3210 ra all) 07] 6'0% "Anyoy nioyosı/ snmpydaaounpu sna9oT X -F 8%
(wang
-wns() g/2 z !z/p ze :Plauoummogr op) (0861 'JP1Aq WTTTANONYNOFL TA)
(?s209np "UÄs SUSLEA 194) (Hast -zerla'zTr) x
(8008 1'335 —0'61(2'81)(0'87)
vyılurduug, sop Spuspıon um) ıpunay) _ 87% — er] 8‘0z | uuwumon Pn.ınqumsn snypydoooumpau sna90)T OL
(0867 "IPNIq 'ONAIH
(wanqums -ust], yoru g !zL67 'n T96T ANIDODINT)
a/7 :odnoay mars zo :ourdodtıg) 3 11°0-91°0 = LIT BET X 9°08 9'617
UOISOPOUM-N-N BIWZ-O UM-N 9 91% 8600 910 ep] 6'61 "pair 2sIo0qnp snypydorounpaw SNDOT L
(BLIOdIN UOA AOIST) (689 'S
(pıbonst =) ‘GE6I SIT "Taanug XP NIvaunop ypru OL)
(Jaynzosur Fydro]jpprA) 3 08°0-91'0 = GPL TEIL X 2°08—-Q°L1
9WwoT ORg !reypg-TDurgnog SIq BLIOSIN 16 E61 eIt'o | 9270 s’eI 0'61 (weygerg) supppdno snppydaaounppw sna9olT &1
(douog uoA aoız]) (saw "zug 'LVO)
(nıbpnst ‘sautogupydhr] =) (4x L, Pyoıs) OFI-LEIXSTIE—-8'61
voumg) (Log) Sıq [edouog = 017 = — 66€ oz | CD mypydaoounpw snpwydorounppw SNO9OLT 9
34 ) p 8 d V
580
(£L6T ENvaH N auvag yowu)
581
(a2) #89 :1oqeg]]
[(ygAjgg) srmaus "Tyosuro|
(109 MUoyaS F'SÄap "Lug "uvp) !NMoN
-UHEN SO] N 6 '8 °PE6T Yayıvg ur awar)
3870 -F1‘0 = TOT FIELX HT 2'81
uojkog *uorpuz “urgsipeg | Y08'L r77 9600 | 091°0 PP P°08 (‚ssorg) sdoorany] ınkumw snd90T 18
(su9ayyogg ‘19999MUoyaSı
I(g—z)p -g/ :ıoyeg] :8°8 ‘p667 Aasıvg saw 'wuel "LVO)
ysoprjsungg ur andıurpy 3 .08°0—-91'0 = E91 -g'E1 X 977 — 1'871
"n wessy stq OQ “uoipup-N nm urgsppeg-N | %gL | 09a | 0070 | 0870 | 0'01 807 (snovwuug) sısuappyBuag sn99077 001
(wuryn T/E
o feangqunsp g/z :aodnoayy fıpunan "wang (0861 "pPpragq ‘rar 'n ONATHUT,
S -wnsn p/T ‘g/ı :z/g :PjfAuouanog op) “ATITANONUNOE TA yaru g 'Azg 6 AZ TE
‘© [CAayay) :P96] NIAvHr) !8g6] ALMLVTOS D NOSMDOVL)
° snyauhyıhyond sopunydhyanı =] 3 07'0-E£T'0 =
ri vylundung- MN N uorums EFL-8'ZIH'ZT) X E0S-E'LT
z; sqy-s sig woduy-N 'n ouoorg was | Yor‘ı | 82T | 680%0 | 88ro | #81 L'8] (Koppoys) snsorgoudns smoooJg x -F EP
= [(ssoT) sasuaunant = !991999071 = ] (A9PMUOYAS
“ BARP 'n Bıyeung :sonygumwodky :89] 8 ‘4967 ANTMAUTHOOH 9 SuauauaaT
4 [(ssof) susuounanl = ISCH ©7198 8 '6P6I AUAMUTDOOH !FE6l
n ‘oump »onsÄ.ryo 0799007.] 910119 UHNVEL uayvep °'SaWw "wu LVO NUOMUHEN)
2 10q ‘ouungg smoshuyo = DOT —] 3 330-0910 = SFT -E'31X 05-197
n BUryDUL00r) “Byospog (4xa,L Oy2ıs) (uwunaedg) snyyunwodkry
-wey) ‘purjiey, wwangg :snowumufiy | Keol| 18° ızr’o | E8T‘o 9‘E] G‘87 N UBUDIOLL Snowmwuauhy snyyunwodhy sna90)T SLI
(oduogejequuy
ur Auoyıdurp 10q p/z :g/g !z/p : 1007 (0867 "jpraq “naryy yavu)
"oA "punog uogsoM ur sweipM "V) 3 86808830 = H°II-1PIX TE 0561
auyswärpen- MS n "M |i%g‘oT | 9‘ | 8600 | 0120 | 01 | 808 (zO1107 2 PA) ou nannspps SNINT TE
(su9ayog] :19999M
-UOUAS : 4167 NOSNag °'SAW "LIugg "LVO
(p—z/» :uosuogg) ‘NUONUHAN °11%°'S ‘LL8] TAavızuvy)
(um) sopsuad = \smaaumaıpNn =] 3 830-910 = GIT BEI X 475-661
ABHSBIRPRA-N N -O Ins 897 goT‘o 610 1‘C7 60% (1odoag) raumooyypu sSn9907-T 99
a4 9) pP 8 d V
[C’qu9) snjpydaooınmum
:sojngp !snjo@goahg = !sopaydufg = ]
04
oPURU1D T UNDWUN BLIOSIN-O SOISIOENR
(vfeppwip g/o :aodnoıy
:Yuofgoy]-J00149]09) |
A UOISOPOYUM-N"N
z; momwz-oS sg BLVy- MSN 'n vjoduy 29' - 9°0%
2 (tgoamın T/J :punoy
Eu 'oM Ur UBMDWog URA 5/0 :UoRoRf)
° BRBOULIOU-T = f
Be | (sopoJdoumoyT =)
5 vyıluesung-M 'n Rudy
= M urpng-g sıq vfosuy-N 'n unpwury | %9'% Nytd 190°0 | 8210 rg]
bo 0/9 YBQL
Au (Fr g/9 :sg19q04)
‚("yyorg suppbauh —
sno4goahst = !sopayduwhgt =)
purjdesf-O
wASsunLT-O "TIEN “N Aaeme) puwpning 61’ eo 875
UDIKOPOYNF-S-O 'n punf
-BSBBIN 'onbıqwwdon- N wsytluvsur]-OSs gH'7 - 671 01%
(sngougoakst = !sopayduhst =)
AargIsung
ayıluwdurg-ON SIq vIıBWwog sojsyDTrpns age - GL] 07%
r -
au D P 3 a
Di
(NHONUHSEN SSLOVnEEVH,)
15°0 197 —-9'91 X 197-817
"SAG) Sogar : oarıgnu sngu PN
(VENTDODIU.] !SIMLVEL
EG687 "TEE 'S "gr UIO 'J uanop Ianosay])
gro = 89T -FHT X g’95 917
(Ava) suapu snguad A
(ao0H17 yoru)
| IK 0] H Du sua umpDgqV SngumDd N
(19999 MUOYOSI FIEHOSANT)
0970 = 0°LI-FEL X EES-9'08
"nyoy snpyund
"n (uIssup)) SnDnos enDymas snqua» N
(qnepaepj) PRwoympuns Sna907J
(64167 TIVMNIASY N WALES
-NUSTRLS FUT ENLTO-NOOUTMTON) YorU)
(SRH0E) sasuojohum Snd907L
(0867 "orig “raryy yoru
Io 1 F9Og8 HP 'S UOgo om ‘a8 ryparu gg "S
GGF FENIDOHTAET FULvaOS 9 NOSMDVL)
3 8310 = 091-091 X 087 0'775
(odaryg) suubısun syußısun Sna90]T
(SLURTTON SAW \Laugg LVO) INNONMHEN)
HIT 091 X675 608
"A JoJo0 400g SNA9O]T
(UTEOTEE Sserrug San) !NMONALSEN)
391 =-g'P1X0'7 061
(Ayo X aoyosı,]) Suoafıorjs 4070019 SNA90]T
(uaoy.ıyon Sunpumumg)
qnepjıerf] X Yosur] 2uo7s4ay 4ojong SNA90)T
29. Ordnung
584
L(O86T IF 'S MO
suyo "Buoy) "ug "ıfy ung "AT »®Ooaa
“INSMONINYW) lg = zg‘g/o :(puyosL)
vuourele],N 199 se UPPUODLOJ AP
(19199 MuUoyaS ! Ip '
"I@67 PIZNDAN "MONAHDIAY !NNOMUHAN)
n gosorp Jorgodyasi aoqu :8°7/0 SV] (4X0L ps) 3.61°0—81°0 = 0°FT-L'ZI X 0'058 E'L1
1IRIpg-TDurgN sıq Doug | %g'6 81" 9710 | 0:10 Fe] G'8] (snowuurg) poppnb noyonb woon® GI
(suoayogf !096T SIqL Trug Jıynjodun
(z/> :sy1oqoy) JIOp ‘Pg6T NIavHn) ZIP 'S 'IZ6T PIZNAAN
(seruoyg [Io], 1995049 SAW \LIUET "LV/) !NMONUHSN !TTHOSANT)
n Penafy-o8uoy] :uoypon]) [RYUN 3 080-F1'0 = EHI -SZIXLOZ-FLI
N 'n uorumssogqy sıq Bfosuy 'n [udousg %9'6 811 #110 | 0:10 rg] 8'8I (qnepiep) sdoayk.ıo Dopon® X -H 09
UDISOPOUM-N (0861 "priq 'onaımam
“(MN done) wyılundur], !amısopoy.«4 yowu g !SANAT 0867 YANNINS !'SOW
(ipunan wangqwns] \LIUg] LVO) OpRf sna NIWST/NMOMUHSEN)
g/d :aodnoıyy *g/0 uoyos ‘7/0 :soud]) 3 007°0— 860°0 = 0'EI IT X 48T 6'917
eyıluwdurf- MN m OImZ-ON para X yuman) opısopoy.«
SIG UOTUISSOAYY-g N URPNS-OS !soppunpımo | Vr'L GE] z80'0 | 960°0 e'z] au n (nem) Seppurpımo sıppurpano POInd gg
(0867 PNA
"WTTIANONANOE HA yaru 9:61 'S ‘OL6T
(puwpussein p/T :z/T :oIlA SAWVP !6ZP 'S ‘4967 SLUTTON !UaHoTagg
-UOUMOog op !p uoypos 'g/ :aoyojog] :08'S ‘7061 MONHHOMM 'Fz 'S ‘0061
VIODSUY-S 'n BuRM qp “Tavasuvm !FRR'S ‘7S8] auvavı)
-SJ0E7]-N SIG UEropoyy-S 'n -N "Bamz 091-671 X 615 —0°61
-OS aoqn onbıiquwdon 'n vyyılurdun]-oS - I1'z - 0] G'0z (IPAPpung) sdaanugn.a sdooanign«a snguapmw X - SL
(NOSNAE !TTOUS !PEGT SENAT !NIWH
[Caperj) seyounpu = !sopajydnuy = | /NYUOMUHAN °19°'S 'LO6T YaDNnvaam 'A)
vyılurdung-g 'n 8 F7°0— 310 = I FI -9'EIX 073-061
(S 1ogne) wıgwog sıq vfoduy 'n asus | %0'9 06 9.00 | 0870 sr 0'1% (don) sngouoona7 sdonugn.ı snquapm 6
(unIDWBNT UOA AOIf])
("ayay sdoonign.« snagookgt "[yasuı) (SULVE yaru) HOT X C'FZ- 077
rpuwdn]-M SIq B[foduy-N 'n unaowm‘g == sz‘E 0'9] e'77Z (umpneqg) snorgungpww snorgwrpu snqumpw %
(9EE 'S ‘OIGT NUONUHAN yaru)
(BYLIEISO A !NUOMNHEN) ‚(qnepary)
BTIODIN- AM SIQ DUOHTT WALIOIS — 97'z - -- 0'P1 0‘12 suo4fabru snnquampu num %
au 9) p d a
585
Passeriformes: Ploceidae
(O86T "PLA "ONAIHATT, yaru g !suoayag]
:19II9MUOYUIS 1886] TTAHS !Pg6L SENAT
SO LIU] LVO): NNONUHUN > TCHOSAN)
\eerspeoetalißer >) 3 770-010 = TEI-ITIXO'8I -9H1
(0 zone) oapz 'n ange sıq pudouog | Ges | 68T | 9600 | erro | 9zı | 991 (uw) af sofn sopajdny Tg
(808 8 'P961 Nav)
(gnowaY 2/0 z :urdeyp) HET 0:6, X SI 7]
(Sn O9 dogne) oaez n unweyf-OS — 897 = — gel Bo (MOUSE) snwwoun sopojdnsy F
(SAW LIug "LVO !218] TAVLLavVH)
071-081 X 061 0'871
ZANDLIPO = GyT — — Fe] #8] U0OIMON SUDIIAaDı| BıpnoT €
[C ws) Dppydaooaypk.o = :suyyunonso N = | (FI 'S ‘1187 aavanavd yoeu)
SNIILINTTA, — 01% — = 0°F1 8°61] (umpwn)) Dıgnı pıpnot &
| (OL61
‘877 me ‘sog [[OoYV ‘NOSLvV M-Saauoyg)
(UELOWON) IIIYOM (uSgSLIYDSOgq AKeN PUYo) ‘dep mwnssiguaunus punssıquaunud DıpnoJ —
(0961 *701 'S “AEOT SIAT “NOSNASL)
(I9LISNO 9 SPIRAPF-OUJLM)
(u910woN) uenoluy = er'z _ — 2°C1 8‘61 sısuaupnlun Dunssyuaunud pıpnoT 1
(9L6T "LIT 'S’STT SIAT HLIU SP68T—E68T
‘or 'S a SUN eN SN 901 “auIaNnıg)
(p/> pewuro ‘8/0 :yylay) CT —0'PT X TI 067
@agqepIV — 95% — — G‘#J F'07 ARMSPIT PUnignppp wwnssyuaunmo wıpnoA LI
ROH "98 (A949, MUOYOS ISA "“LIAg "LVO
“uorunay “SnIyLmeN] “uojjoypkag ‘eIg'S ‘LLST davıLaydy "NMOMUHEN)
“Uayuwatuıy “U9LOULON) :9109.1Nq99 8 870-870 = 091-171 X 86T 011
-UIO YOIuToyosayem !auyseörpeW NEE s1“T EeIr‘o G9T'0 pe] G‘87 ("T) sasunrımospbnpnu nıpnoT 08
(618 'S ‘0L61
SUMVP !uossojyosodum (yOSUurT) vassınd Z
Ig=)P 8/0 :saogoy] 0861 ‘878 ‘07 og "100 “TINNINS)
STERN] 091 8'281 X 918 X 6'971
-$ SIG UOIBOPOoUYUNYT-N 'n OIWZ-OS ‘B[oHUy — 261 — — s‘e] 8'sı (yyıwg) vwwmym woronb voran) 19
arumyD] (PFFI 'S 'SE6T AHLVIOS PD NOSMDVL ydru)
nz Suedaogy) Surz-o 'n wyıluegurg, un DET -0TTX 06T -0'LT
“eruosf 'n epurdn "eIfewog sıq vepng- MN = se‘I = le = 0'z1 0's1 (1?APpung) »ordorygon wojonb woran) TI
29. Ordnung
586
[CwnoNn) snorpwazfis [yosum !("sag) 5dad
wu] punppwosh| :NYOMUHAN 194]
(waoT
oysyowu doqe 's) uasopoyy-S eyıl
-uvdur], ‘BIUoy-O Sıq vjoduy 'n pedouog | Es | 88T | 0010 | SHr/o
[(z)g/> :uossprf]
avqısung ‘onbıquuwöon-g stq PrUOy-OS | %L'6 or I 6010 | SET
[epuwsn (F—z)g/> :urwugıg ]
SIBZrON
SOSE NR Bpurdj] “uarumssogqy-g urpng-g — 8C'z : —
(g/> :weysuruung)
eyrluwsur L-ON "RIUSY-OS “wgnp a9ıoyun _ se] = =
(g—g/ :sy1ogoy)
(punpwo4hg =)
BNLIFV- MS RJoSUY-S :yuusı1od
‘purpdey-Q ‘onbıquwson-g ‘purjessun | %g‘L 91 800 | OTTO
(egsqy
-SIPPY 7/I :u9wwog urA-weysuruung) -— c0'z — =
(pugpejpeg-Issnay :a0durpıgg "A) %s8°L gr] 160°0 | EIT'O
[Cpas]) suopoauogurn = !wunppwoah] =
UOTUISSOAV
(punpwo4h] =)
vyıluwdur,-N BIuoy-[eaguoz n -N
uoA 9a], epursn ARZ-ON “Urpng-S — &9°7] = —
34a 3) p 3
(199PAMUOYaS
05# 'S 'FC6I NlavHj) !UHLVIOS 9 NOSNOYVP
"SIE 'S ‘0E6T ALHITAL 7167 INIDODIUT
:6P6T LNHONIA :099 'S 'GE6T SIAL "TILAHS
9 NIvaunof !NYUOMUHAN '684 'S ‘TI6I
"pr :6# 'S 6067 SIT ‘STLVg !TAHOSay)
3 11°0- E10 = 871 1'371 X #°08-%'S1
LET F'S] ("T) SNIIDIPAOY SNIIDIPALOY sapajdna] 16
(9561 “FeL'S FL WO
er "uanof “ULLSNAHOS “saw "LIME "LV\)
: NMOMUHUN :C681 TAHOSAM u MAHOSLT)
3970-10 = 6'321 -IZIX 8 LT 201
G'2] 89] UISSET) sa.uuaaoıbıu sopardn] 8
(NIAVH9) EIT-—E FIX 083 E81
€] L°0z ("yaerf) Vab1osun amosuaıb sopaJdnJT —
(NAYUAWOS NVA-WVHONINNAY) yaru)
G'71 G'9] "MUyUo4 N | SNIDWAPDTP sopajdnz 5
(1OYP9MUOYAS :085 'S ‘0L6I SANVL
:SLAUTIOY "Sam "LIME "LVY) !NYOMUHAN)
3 870-600 = SFT 611 X L'IZ—-'91
era 9°] yyus »yD? ofn sopadna] 6rI
(NAUIWOS NVA-NVHDNINNA/))
6'811 8°61 0°PT-8ETX 007-461 3
(AHONVIYHE "A)
671 r'91 3 310-110 = 0’EI -9'71 X0°LT-0°91 F
near Snppuus ofd sopaJdnıT
(6861 "ICHE 'S 'T6 SIQT "NAUANOS
NVA-WVHDNINNNT) “ASLLVIOS N NOSMOVPL)
820 SL XO8T
Na SE "Ayoy sısuaopn 1oln sopagdny X +X
da V
Le)
eriformes: Ploceidae
3
Pas
(dosswdsnı]o) =)
UOTLISSOAQV
(2 @8/P :8aogoy :opioq any]
) :BOULP)
(MN oyıne)
puujdusg yuwmgstoapodunug "TUBARUMLT,
(uSTs9poyy-S n -N Hmm dord])
(1ppaopuns = tpunpowosuh] =)
pugpdusp MN N WSILLV- MS
Rosuy-s 8Ig eyuNn mn onbiqwmson-s
(UOIBOPOYUNM-SEN "UOTBOPOUN
-N purpusswın "wo "UA BULLET
199) "dep 27ppaopuns »punpussuin Saoyojogl
(My apaıma = Duni] =)
onbrqumdon
N PUUTUESUIN BIq VBTUONT N INUZSO)
(punpwosh] =)
wog "usrussogqyro nm > Senpınd
(pP 8/0 :aoyoay)
RIO MN BIq unaoumy]
-N 'n mepng aoqn [udouog Ismumosıoumdf
(JIN 0a0g0 "upua g/I Faodnoııı)
(g/o :uossppup)
(1B0A91] ad =)
USTLIEBOHY- MS puma) muss AN
EL 16‘
Vnt tm
040] 008
086
991
09
801 Gh]
38 gg
%s8 19")
16°]
EO1O
E10
IS1’0
VITO
XS, DYDIS
8510
I60°0
190°0
g11'0
N)
6200
yr]
07)
we
ve
08]
106
06]
6'601
vd
VL
98]
(II JOMLOLTOSI
SNMONUHDN 9] 'S "2061 MADNVAaUS] "A)
8 7910-1910 = 0'917 =0"F1 X 0%
061
pdduy spoppworyunae sisuadno sopordni] 6
(1OYIDMUOUTOS FRUDATOEL :POGT MOND
IN] BO \bigp "LVO F9G68T Tunosay)
95.0110 = E91 LEI X TTS 201
snprbung mn wo wı.to sappordng]
(088 "8
“9161 Sunvp 9GB 'S "LI6) Binmmeor])
LOT-0ETXOTZ-0'1
Aonung) smpadung wo sopojdnıy 181
(085 '8 '0L67 SUmVL)
KR ar
661 6%
UL
(snonruu]) ao wo soponydnıy LE
(118 8 0861 Name, yauu)
(10799M
-UOLOS I TEI N PEGT BUNATL I NNONUHEN)
0961°0-0P1'0 = SFT -0'51 X 6'061 8°
9
[01 \
(wog) suo@fuıbın wrıo sopojdns Ol
sc
(6P 1 'S 1961
NVYWaoh N NMENDMV 2099 'S 986) Ting
N NIvaunop "BA "Lig NLVe) SBORLVEL
‘2061 MMDNVAUSE "A SOG8T MTNOSON])
2 07°0—= 110 = 091-8 51 xXg 67-8
(aaa) Srypıs
“nd mn (Naos])
(0867 "PLA ONATHAT, yorU)
L0°0 = GEI OH SIXT
UNIV P SENDONTA INITONGEH)
6 PT =TE1X<061
(dep) smiydopadsnuo Snoonap.4oy soroajdınay
800
(958 8'040]
U
snunasımunaf ao sopojdna] 8%
a u
DLTIK
29. Ordnung
588
(a9yyPnUgUOS !OL6T
sunvp :OpP 'S 'LI6] SLUAaoy !usıHoTag
(dasspdsnı]0) =) SAW "LIAg] "LVO !NMOMUHAN !auvaAvTT])
purdeyp-o sıq pur] 3 970-310 = Z'I1 -Y'EIX9T3— ‘LI
-BESEIN-S OIMOS UEISSPOUT-SO M-NO | %8'9 60°7 880°0 a) Pl 9°61 (ypug) seumypan sammen sopaJdnT OT
awgısung uyyıl (19199 MUOYOS !SCHT 'S 'SE6T NOS
-UBSURL-O SIq BILWOS-g :FnDI.ımqızumz -MOVP RP UHLVIOS !086T ITS 'S ‘zZ no]
(nhyanıqoa) =) -OPUg] "NVHHNOLS !LEE "S 'C68T TAHOSAYM)
UOISOPOYUM-N UT uoadaoqy n vyılundurs, 3 91°0—- 110 = SFT -Z EI X 013 — ‘LI
-M SIq oAmZ-O SOgsaogna epursn (Aojoyg) snorwgizunz n (uNonoH)
doqn uorumssoqy-g 'n unpng-Q :snanwoyd | %g'9 L0'2 gg10 SH 6] snoauaoyd sıumypun sopajdn X + 0%
(vjoduy
“yury ovaowyyugg g/T :aodnaıy) (0867 "IPLIq 'ONAIHNALL YPru)
UOISOPoyy-N-MN 'n v[oduy stq 8 31°0 = OFT -FETX 08T -g°L1
undowmexg 'n dodın dodsgo | %8'9 61,1 9770 2310 €] Ss] (odıwyg) 295n90g seunypan sopsjdnsy €
(1999 M
-UOYOg !sU91yag] FUoL AA "SON !TTG 'S 'OL6I
SANVL !2EP'S "1967 SLUHaoy !LNAONIA
[((F-D)gE/P :syıogqoy] saw ‘Lug "LVO !NUOMUHAN !duvAv])
|(odarys) puonpau 3 180-9170 =
-JUOYNUDE — 910110 !uossndsnı]o) = PIT—LFILZ’ET) X 087 0'617
WEL 097 8600 | 8870 Page! 17 (T) sısuodno sısuadno sopajdn TOI
(1OYJPMUOYOS ! 17T 'S
"OL6F SAWVP :Lg6T STUaaoyg *T0Og 'S
purdesp- A
(osspdsnıJo,) =) “6767 LNAONIA !aany !'Sa "LIug LVO)
(MN Pgn®) 1’9I-ZEIXP3S-T'87 -
purpdeyy sıq uodwr] D1opolu "TRRASURLL -- 232°7 _ = ep] G'0% (stuvgquy) sunwumosddn sısuadıa SEPANnT SE
[spa (0867 "1714
-oygune spe yaıyospey 170 !sJıogoy sıs ‘ONAIHAUHL yORU TF !a9yyPAMUOUOS !SANVL
-Uoppnasuna = !(goy) sısunsoqunz = !INHONIA !096T °6 'S 'FZ OU [OO "aıLHo
ayoy olwgns = !uasspdsnon = | -"ISTET !OPZ 'S 976] SLUaaoy !NNONMHAN)
[SSARUBL], 3 F7°0—-31°0 = ZI -L'ZIX ITS 89T
ur uoder] 910yoy sıq Samz-o n wos | %6'9 os] #800 | FzT'o wel 181 (gueiy-80) sausodussnı0 sısuad»o sopaJAnT 771
Sy 0) pP hi d
er T—————————————————————————————————————————————————————
589
Ploceidae
Passeriformes
veyıluwdurg-ON 'n vIuoyy ur purpyooll _
(dosspdsn?]00) =)
UOTUIBBOqY BOTgLIsE-g unrpng-O8S | %1'L
(einqumsp g/T :z/1 108naayı)
(dossndsn]00 =)
onbrqumd
-ON ST OS dOpom oujozum wpundn
n URPnS- MS STq v[oduy 'n suoor waraıs | %6'9
(E-7/0 :sy1ogoy)
(dasspdsnı]0) =)
jeyen 'n pewasurag, ur
-8J0E7-ON SIq OAIMZ-OS 'n ayyıluwdun]-s
(einqwnsf g/I }1odnoaıyy !wang
-wnsn p/T !g/r !z/g :PfAuoumo—g op)
vg Byılundung,
ıpunafy-wpuenyg
pusdon n
%g'9
WOA MN
Dumz- M
BYLIFV- MS-N Sg ungun) :onunıgowufisn
($ aognv) uyılundung, ‘(o0g wyyılundur,
-N we puoson) 'n vpueny Fypru) Bruoy]
n Rpundy) “uorumssogqy-g “urpng :59n9
(tysequunanry Z/o :yuoourA)
UOTSOPOUM-N "DAnZ-S Rfoduy =
[(’ayoyy) «oros = !sısdor.goy]
-ua] :NMOMUHSEN 109 !uosspdsn?]on = |
(SOOBUSSTIN SOP OURN dognn)
onbıiquwdson 'n purjussuin “Uorsopoyy
-g wpoduy sıq wepng-g 'n [udoueg
88°]
00°7
v8
91T
80°
68°]
guz
807
680°0
7800
8800
7800
9800
P
sr1‘o 071
810 wel
0310 a
Ig1°0 or
(0280) “rl
96]
"61
9'871
L’sl
76]
0'375
66
(8EGT ULVTOS N NOSMDOVL)
091 =0'81 X 0'237 061
(u91ULoSt una) D) WIEYPNS SUaPAD sopordnzy
(LO6T ‘97 'S
“LIOQ '7 "uanop UADNVIUS] "A yoru)
3 91°0- 310 = UT 0'EI X 005 - 0'871
(ar) ppnoonpy suopın sopajdnny 9%
(0867 'prag ‘onAmaum, yaru g INTIVES))
8 #7°0-17°0 = PHT-EEI X L/6T-LLI
(uIsER7)) 0709U09 Suap.«ım sopajdn L
(1OPPMUOYON ! 155 'S
‘0L67 SUnVP !6gP 'S ‘1967 Fanadoy)
3810-310
991 — 1'231 x 808 E'91l9‘g1)
(ussR/)) SRIWIOUOND Snmjouog]n sopojdnıt GI
(0867 "1PT1q "ONATHUMT,
N BTTTANONANOF Ma yavu g 'MzZA zz)
3910 = SI -0EI1 XV 75161
ÖlzunoN ıssps SnDJouogD SopaldnT 9%
(OP MUOUHS
061 “PE6T SUNAT : TIP 'S "8E6T Mk
-VIOS °P NOSNDVL FUNODVIACL :AVAUON)
ETI-TEL !pulug]
vqwogT
“ırgisunrg URASURIL SIQ SS SENLV
oO wı 'n uorumssoqy SIq PUOHT WALIOIS
(82/9)
x (wıuosg g/0 :108
-norsg Frgomen g/D :ojflAuoumosgg op)
(sopaydoundau =)
vgl
-UBDURL-[rayuoz 'n Bruoyr-Jeguaz n - MA
Ir -z)g/p :yuoourA]
(Boy) =
ip ıundoamug = !dosspdsnıo) =)
purydeyp-O STq uOIRopouyq-N
(uuwwnon 2ab1osum
auboud nundogmg = !uosspdsnyo) =
DIRZ-g Boduy
(vruoyg *dosururyg-g
a/> ol :aodnoıyy 'n ofjlauoumog] op)
[BL II N Bruoyg IN USOSIAZ BIUON-O
(men (PE—7/ Hıysvq
-umqnT g aodıuom *7/o :yuoourA)
(snymAsooN) =
muaypuag = !4asspdsnıpon) =) pur]
-desp-ON $S14 OS “(N wopeayuoz aoeıne)
eyıluwsurg pur BamzZ-OS "rJoduy
167
OLE
eo
66
88°]
(IX9L, Pypıs)
180°0
9800
6800
0800
ın
791
E87
061
(6L6T "PTIq “ANAVI !SLUTEON)
0°ET-LOTXELI-6FT
(sturqw))) sıquagun nzıdsopwouy 9
(0867 "JP1AQ ONATHNTLT, U ATTIANONANOST
sta yoru 5 ol !Cg6T ENYUHY) 9 auvudg)
3 L1‘0—9T'0 = FIT —0'91 X E77 —8‘08
(odavyg) zuösyonl sopaydnzy x + 9
(191991
-UOYS 172% S ‘0L6T SEnvP !sıuaaoy)
3 087°0-8F10 = GIT- TFT X 073 0'61
(119BppogL) auboud auboud sopajdnT 99T
(NIAVH9) 0°LI 091 X 0'878 —-0'35
8I9JJO MA WINODDppp auboud sopajdnT —
(0867 "Prag ‘OnA
-IHUML "N BTTIANONUNOF Ha you zZ ol)
3730 67'0 = 99T —6‘91 X 89a —g'17
(Aoyppyg) 2auumpp aubo«d sopajdny F
(9761
9zL SS ‘pl, "WIO 'J 'F "UNLSAHOS !.10I49M
-UOYDS !SAIWVP SENHONTA :COFT "S ‘geßT
UMLVITIS 9 NOSNDVP !FZE£ 'S ‘0E6T AHO
-ITEL SEP 'S 'LG67T STUHUOM !NUONMHAN)
3 07170-811700 =
SPI—L'ZTX 608 —8'LI(E‘LT)
(KIORPPOoSFL) suopın suopın SOPOJAnT LLN
Passeriformes: Sturnidae 591
Familie Sturnidae, Stare
[Anordnung und Benennung nach Amavon in: Check-list of birds of the world 15,
1962, S. 75—121, also nach PETERS, wie er hier zitiert wird.
Die Zugehörigkeit zu den Staren ist bei fast allen Angehörigen dieser Familie in
Körperbau und Lebensweise (abgesehen von Buphagus). niemals zweifelhaft gewesen.
Hinzugekommen ist nur Saroglossa spiloptera, deren Eier schon von NEHRKORN (1910,
S. 214) als Aplonis-, also starenähnlich erkannt wurden, wenn er die Art auch wie
SHARPE (1903, S. 64) bei den Timaliidae unterbrachte. Fortgenommen wurde Philestur-
nus, der jetzt zu den Grallinidae gehört. Auf dem reich besetzten Blatt der ehemals
allgemein, auch von NEHRKORN, benutzten Gattungsnamen ist durch drastische Kür-
zung nach Amavon (Amer. Mus. Nov. 1247, S. 1—16, 1943, und 1803,-8. 1—41, 1956)
wenig übrig geblieben:
Aethiopsar wurde Acridotheres,
Agriopsar wurde Sturnus,
Amydrus wurde Onychognathus,
Eulabes wurde Gracula,
Graeulipica (recte Gracupica) wurde Sturnus,
Hoagiopsar wurde Onychognathus,
Hartlaubius wurde Saroglossa,
Lamprocolius wurde Lamprotornis,
Lamprocorax wurde Aplonis,
Pastor wurde Sturnus,
Psaroglossa wurde Saroglossa,
Pyrrhochira (recte Pyrrhocheira) wurde Onychognathus,
Spodiopsar wurde Sturnus,
Sturnia wurde Sturnus,
' Sturnopastor wurde Sturnus,
Temenuchus wurde Sturnus.
Die Sturnidae und Eulabetidae, Stare und Glanzstare, die NEHRKORN (1910, S. 348
bis 349 bzw. 350—352) wie SHARPE (1909, S. 512—521 bzw. 521—545) aufführte,
werden heute allgemein nicht einmal als Unterfamilien getrennt, sondern in der Unter-
familie Sturninae zusammengefaßt. Die 2. Unterfamilie enthält nur die Gattung Bu-
phagus (bei NEHRKORN noch fehlend, bei SHARPE 1909, S. 546, als Buphagidae).
Die Gattungsgruppen der Sturninae, die sich von Aplonis bis Saroglossa als Glanz-
stare, von C’reatophora bis Acridotheres als Echte Stare und Meinas, von Ampeliceps bis
Gracula als Grackel und Beos bezeichnen lassen, denen Enodes und Scissirostrum als
Celebes-Stare anzufügen wären, können wir oologisch nicht scharf trennen; aber die
zuletzt genannte Gruppe ist ungenügend bekannt. Die Glanzstare legen gefleckte, blau-
grundige Eier, die Echten Stare mit 3 oder 4 Ausnahmen ungefleckt blaue, die Beos
wieder gefleckte und Scissirostrum anscheinend ungefleckte Eier. Die Buphaginae
weichen von allen anderen Sturnidae oologisch ab. Alle Stare sind Höhlenbrüter, deren
Eier von außen nicht sichtbar sind.
A. Eier einfarbig
1. Weiß: Spreo hildebrandti; errore: Buphagus africanus; durch Ausblassen oder
abnorm: Sturnus vulgaris und wohl andere Arten.
2. Bläulichweiß: Creatophora cinerea, Sturnus vulgaris faroensis u. humii, St. roseus.
3. Blaßblau (himmelblau bis türkisblau): Onychognathus walleri elgonensis (auch
gefleckt?), ©. blythii (meist gefleckt), Lamprotornis corruscus, L. mevesii, L. pupureus,
L. caudatus, Creatophora, Sturnus senex (wenig bekannt), St. sturninus (auch dunkler),
592 29. Ordnung
St. vulgaris (s. a. 2.), St. unicolor, St. sinensis (auch mit Flecken), Leucopsar rothschildi
(s. S. 601), Acridotheres cristatellus, Ampeliceps coronatus.
4. Satter hellblau: Sturnus malabaricus (auch heller), St. erythropygius, St. pagodarum
(auch heller), St. philippinus (auch heller), St. cineraceus, St. contra, St. nigricollis (auch
gefleckt), St. burmanicus, St. melanopterus, Acridotheres ginginianus, A. fuscus, A.
grandis, A. cristatellus (s. a. 3.), Scissirostrum dubium.
5. Dunkelblau: Spreo superbus, Acridotheres tristis, A. ginginianus (s. a. 4.), A. fuscus
(meist heller, s. 4.), A. grandis (s. a. 4.), A. albocinctus (auch gefleckt).
6. Erbsengrün: Acridotheres f. fuscus (abnorm).
7. Blaßolivbräunlich: Sturnus roseus (abnorm).
B. Eier gefleckt
8. Weiß mit rötlichen Flecken: Onychognathus tenuirostris theresae.
9. Fast weiß (bis hell fleischfarben?), Flecke kastanienbraun, purpurrötlich und lila-
grau: Aplonis metallica, A. p. panayensis, A. p.tytleri, A. brunneicapilla. — Flecke nur
rötlich: Onychognathus tenuirostris. — Rosaweiß, Flecke braun, purpurn, rötlich u. lila:
Buphagus.
10. Bläulichweiß, Flecke rund, braun, ziegelrot u. lila, manchmal im Kranz oder fast
ungefleckt: Cinnyrieinclus leucogaster.
1i. Blaß hellblau, Zeichnung punktförmig rotbraun und violettgrau: Onychognathus
morio. — Flecke purpurrot und ziegelrot: Lamprotornis australis. — Zeichnung grob
kastanienbraun bis purpurrötlich, dazu lilagrau: Aplonis metallica. — Mitteldunkel
oder blaß rotbraun, dazu lila: Sarcops calvus. — Zusätzlich tief braune, zum Teil zu-
sammenfließende, oft verwaschene, meist grobe, auch hellere Flecke: Gracula ptilo-
genys, G. religiosa intermedia, G. r. religiosa.
12. Blaß grünlichblau: Fleckchen oder Punkte blaßrot und graurot: Lamprotornis
chalybeus, L. chloropterus elisabeth. — Frickel rotbraun und lila, auch umberbraun:
Lamprotornis splendidus. — Wenig schwarz, auch grau, gepunktet: Sturnus sinensis
(abnorm).
13. Dunkler hellblau, Fleckung sehr blaß und zart: meiste Aplonis. — Fleckung
fein braun und purpurrot: Lamprotornis chalcurus (Gefangenschaft).
14. Leuchtend hell bis türkisblau, a) Fleckung fein rötlich: Onychognathus blythii. —
Fein rost- und lehmfarben: Cosmopsarus regius. — Feine Flecke und Punkte braun:
Saroglossa aurata. — b) Dunkle Fleckung: Runde braune bis schwarze Punkte: Ony-
chognathus tenuirostris, O. albirostris. Flecke braun: Acridotheres albocinctus (abnorm). —
c) Grob sehr blaß braunrot und verloschen grau gefleckt: Mino dumontiüi. — Rötliche
Blattern und kleinere Flecke: Lamprotornis purpuropterus. — d) Flecke grob, auch
feiner, braun, weniger rötlich: Speculipastor bicolor. — Kastanien-, rost- und purpur-
braun gefleckt: Saroglossa spiloptera.
15. Tiefblau, Fleckchen klein, hellbraun: Spreo bicolor. — Flecke rundlich, scharf
begrenzt, violett und dunkel purpurgrau: Spreo fischeri, S. albicapillus, S. pulcher.
16. Hellgrünlich bis blaugrünlich, Flecke klein, rost- und lehmfarben: Cosmopsarus
regius. — Flecke fein und grob, braun, weniger rötlich: Speculipastor bicolor (s. a. 14.).
17. Blaugrau, Flecke dunkelbraun: Poeoptera lugubris. Hrsg.]
Die meist grünlichblaue Grundfärbung erscheint im frischen Zustand dunkler als
nach dem Ausblasen. Innerhalb derselben Art schwankt der Farbton meist nur wenig,
doch neigen besonders die hellen Eier zum Ausblassen beim Altern in der Sammlung.
Größere Unterschiede im Ton zeigen sich bei den verschiedenen Arten. Die meisten
Formen von Sturnus vulgaris stehen mit ihren hellgrünlichblauen Eiern etwa in der
Mitte. Ihnen gegenüber erscheinen die von Sturnus roseus stets erheblich blasser bis
beinahe weiß. Fast alle anderen Arten aber sind dunkler, dabei teils mehr bläulich, teils
mehr grünlich getönt.
Passeriformes: Sturnidae 593
Sehr dicht ist die eventuell vorhandene Zeichnung nie, vielmehr oft recht unbedeutend.
Sie besteht entweder aus feinen Punkten und zarten Fleckchen, die ziemlich gleichmäßig
über die ganze Oberfläche verteilt sind, oder aus gröberen, die dann meist am dicken
Ende zusammenstehen. Bei derselben Art herrscht fast immer nur einer dieser beiden
Fleckungscharaktere vor. Die braune Fleckenfarbe erscheint häufig purpurn oder
kupferrötlich getönt und ist meist nicht sehr dunkel, wenigstens nicht bei den größeren
Flecken, wie sich solehe besonders bei Aplonis, Sarcops und Gracula finden. Graue
Unterflecke fehlen oft, und bei den schwach gefleckten Arten kommen nicht selten
einzelne ungefleckte Eier vor.
Als Gestalt herrscht das am Ende deutlich verjüngte Oval vor, meist vom durch-
schnittlichen Achsenverhältnis (k = 1,30—1,46). Nur die Aplonis-Arten sind oft ge-
drungener als die übrigen Gattungen, aber Aplonis feadensis weicht wie Comopsarus
regius mit k — 1,47 bzw. k = 1,49 durch viel länglichere Gestalt stark ab, und noch
mehr gilt das für Lamprotornis chalybaeus nordmanni mit k = 1,50, Onychognathus
albirostris mit 1,51 und {nach einem Gelege) Lamprotornis chalcurus mit 1,59.
Der Schalenglanz ist bei den Glanzstaren oft geringer als bei den Echten Staren.
Trotz des Glanzes erscheint das Schalenkorn unter der Lupe ziemlich grob mit größeren,
glänzenden Erhebungen, sehr unregelmäßig begrenzten Gruppen zusammengeflossener
Prismenköpfe, getrennt durch matte Senken, die sich oft zu geradlinigen, sehr langen
Rillen in Längsrichtung aneinander reihen, seltener auch quergestellt sind. Viele kleine
Grübchen, aber nicht alle, enthalten recht deutlich ausgeprägte Poren. Im durch-
scheinenden Licht erscheint die Schale im allgemeinen wie die der Oberfläche gefärbt,
also bei den hellen Stücken weiß bis zart gelblich oder meist grünlich getönt, bei den
anderen Stücken grünlichblau oder blau und oft dunkler als die Außenfarbe, so besonders
bei Spreo bicolor und S. superbus, erklärlich, da die Schale stark ausbleicht.
Ungefleckte Stareneier sind zuweilen nicht ganz leicht von manchen der Timaliidae
(Garrulax u.a.) und Turdidae (Monticola, Turdus migratorius) zu unterscheiden, ge-
fleckte nicht leicht von einigen Laniidae und Turdidae (wie Turdus merula und T. philo-
melos). Das Frischvollgewicht G steigt von 2,9 (Poeoptera lugubris) auf 12,5 g (Gracula),
liegt aber im allgemeinen zwischen 4,2 und 9,5g. Das Relative Schalengewicht Rg
schwankt zwischen 5,1 und 7,8%. E
Nach Weibchengewichten bei HEINROTH (1922), SCLATER & MoREAU (1933, S. 208 bis
210), HoescH & NIETHAMMER (1940), RiPLEY & Rapor (1958), RauD & Rapor (Fiel-
diana 35, S.359 u. 411, 1960). RırLeyY (Peabody Mus. Bull. 19, S.45—46, 1964),
GILLIARD & LECROY (Bull. Amer. Mus. Nat. Hist. 132, S. 269, 1966). DIESSELHORST
(1968, S. 202), ERARD & PREvosrt (Bull. Brit. Om. Club 91, S. 21—25, 1971), DiamoxD
(Publ. Nuttall Orn. Club 12, S. 297, 1972), ALı & Rıprey (1972, S. 154— 193), McCLvRE
(Nat. Hist. Bull. Siam Soe. 25, Tafel 13, 1973), EL600D (Bull. Brit. Orn. Club 94, S. 136,
1974), SKEAD (Ostrich Suppl. 12, S. 124, 1977), CLENCH & LEBERMAN (1978), LONGMORE
(briefl. 1980) und Etiketten im Naturhistorischen Museum Wien (SCHIFTER, briefl.)
sowie Zoologischen Museum Hamburg ergeben sich folgende Relativen Eigewichte
(RG) (siehe Seite 394).
RG steigt demnach von 2,9 (wohl zu niedrig), 4, 6 bis 11,9%, wenn wir den überhöhten
Wert bei ‚Lamprotornis splendidus (19,4°%,) nicht ee Stare legen relativ
etwas schwerere Eier als die Corvidae (siehe dort).
Aplonis (= Lamprocorax; — Calornis). In dieser artenreichen Gattung haben die Eier
recht hellen Grund, der blaßbläulich, ins Weiße ziehend, selten gelbgrünlich getönt ist.
Die kastanienbraune bis purpurrötliche und lilagraue Zeichnung ändert in Größe,
Gestalt und Verteilungsart der Flecke beträchtlich ab, auch innerhalb derselben Art,
widerspricht aber in keinem Fall dem einheitlichen Gesamtcharakter gefleckter Eier
der Sturnidae. Vorherrschend sind gröbere Flecke am stumpfen Ende gehäuft, kleine
38 Oologie, 37. Lieferung
594 29. Ordnung
Q9-Gewicht Art RG Q-Gewicht Art RG
ıng in % ing in %
415,0 Gracula r. religiosa 2,9 71,5 Lamprotornis nitens
220,0 Mino dumontii kreffti 5,4 phoenicopterus 8,7
202,0 Gracula religiosa intermedia 6,3 68,0 Leucopsar rothschildi 10,6
152,7 Onychognathus morio rueppellii 4,6 65,0 Lamprotornis p. purpureus 9,1
139,9 Sarcops calvus melanotus 5,9 64,0 Creatophora cinerea 10,5
131,3 Onychognathus albirostris 5,3 63,0 Sturnus roseus 10,1
131,6 Sarcops c. calvus 1,2 57,3 Aplonis p. panayensis 9,2
131,0 Sturnus nigricollis 6,6 55,0 Aplonis m. metallica 10,7
107,0 Spreo bicolor 6,7 52,3 Buphagus erythrorhynchus
107,0 Acridotheres t. tristis 7,0 caffer 7,8
103,0 Acridotheres fuscus javanicus 6,7 48,0 Aplonis cantoroides 11,9
100,0 Onychognathus n. nabouroup 9,3 36,4 Sturnus m. malabaricus 11,0
94,5 Acridotheres f. fuscus 7,0 34,0 Lamprotornis s. splendidus 19,4?
73,4 Sturnus v. vulgaris 9,5 31,0 Poeoptera lugubris Br"
Spritzer und Punkte auf der schlanken Eihälfte, ohne mittelgroße Flecke in gleich-
mäßiger Verteilung auszuschließen. Meist ist die Zeichnung nur spärlich; wirklich dicht
gefleckte Stücke gibt es wohl überhaupt nicht. Die breitovale Gestalt überwiegt bei
weitem, doch kommen manchmal auch mehr elliptische Stücke vor. Scharf begrenzte,
mittelgroße rundliche Flecke stehen immer ziemlich isoliert; und andere dieser Größe
sind selten, so auch Zeichnung nur mit Punkten. Ein seidenartiger Glanz ist immer
wenigstens angedeutet. — Wechselnde Eigestalt (k = 1,30— 1,47).
Wegen der-großen Einheitlichkeit lassen sich Unterschiede bei den einzelnen Arten
mit Worten kaum angeben, wenn man nicht nur einzelne Eier vergleicht, die freilich
sehr verschieden aussehen können. Aber solche Eigenheiten sind individuell, nicht
artlich begründet. So bei fast einfarbig weißlichen oder bläulichen Stücken, kranz-
förmig gezeichneten oder solchen mit gleichförmig verteilten Flecken, die gröber oder
klein, dunkel oder hell sind, je für sich oder im Gemenge stehen.
Aplonis atrifusca, tabuensis vitiensis und tabuensis brevirostris. Recht blaß und zart
gezeichnet. Die Übereinstimmung von vitiensis und brevirostris war schon NEHRKORN
(Journ. f. Orn. 27, S. 406, 1879) bekannt. — k = 1,33; 1,33 bzw. 1,40.
Aplonis f. fusca. Nach NorRTH (1909, S. 273) in Baumhöhlen am Ende eines Zweiges
brütend. — k = 1,40.
Aplonis opaca kurodai. Merklich dunkler, aber immer noch hellblau, zum Teil mit
grünlichem Ton. PRATT u. a. (Condor 82, S. 129, 1980) sahen die übliche purpurne und
braune Sprenkelung nur am stumpfen Ende der Eier von Palau. BRaxpr (Condor 64,
S. 432, 1962) nennt die Zeichnung bei Ruk-Eiern kastanienbraun bis schwarz (TER-
HIvvo, briefl. 1981, findet sie schokoladenbraun und grau); andere Eier zeigten überall
nur rostrote Sprenkelung, zwei Gelege waren ungefleckt, alle grünlichblau. — k = 1,39.
Aplonis opaca ponapensis. Wie vorige. Die 3 großen Eier der Sammlung YAMASHINA
(Tori 7, S. 394 f., 1932) mit k = 1,26 (gegen k = 1,35 bei den anderen) sind in der Liste
gesondert angeführt; die Abbildung eines Eies (Tori, Taf. VII, Fig. 1) zeigt auf hell-
blauem Grund spärlich rotbraune Flecke verschiedener Gestalt, die am breiten Ende
gedrängter stehen.
Aplonis dichroa. Sehr spärlich, blaß und zart gefleckt. — k = 1,32. (Taf. 11, Fig. 1.)
Passeriformes: Sturnidae 595
Aplonis grandis malaitae. Wie A. opaca kurodai. Die großen bräunlichen Flecke
fließen am stumpfen Ende etwas zusammen (J. TERHIVUo, briefl. 1981). — k = 1,37.
Aplonis minor minor. Ähnlich der folgenden Rasse, aber feiner gefleckt (HELLE-
BREKERS & HOOGERWERF 1967, S. 149). — k = 1,35.
Aplonis panayensis strigata. Wie A. opaca. Nach Baker (1933, S. 511) wie kleine
Ausgaben von Gracula religiosa indica, wohl etwas blasser in der blauen Grundtönung.
Die tief rotbraunen Flecke stehen am stumpfen Ende meist dichter. Es gibt auch
Flatschen und graulila Unterflecke. Sehr kleine bis schmierfleckengroße und etwa
6 sehr große dunkel rotbraune Ober- sowie einige ebenso große rosagraue und lila Unter-
flecke waren nur auf einem Gelege, ein Ring um das stumpfe Ende auf 2 Eiern eines
Dreiergeleges zu sehen. — k = 1,32.
Aplonis panayensis tytleri. Im allgemeinen recht blaß und fein gefleckt (BAKER 1933,
S. 512), aber das hier abgebildete Ei zeigt kräftigere Fleckung. — k = 1,35. (Taf. 11,
Fig. 2.)
Aplonis metallica metallica und nitida. Im allgemeinen wohl die hellsten Aplonis-
Eier. Dunkelblaue der Rassen metallica oder nitida, wie sie NEHRKORNS Katalog (1910,
S. 351) erwähnt, traf ich leider in seiner Sammlung und wo anders nicht. — k = 1,43
bzw.k = 1,41.
Aplonis metallica purpureiceps. Wie metallica. — k = 1,30.
Aplonis brunneicapilla. Nach TERHIVUOo (briefl. 1981) weißlich, überall, aber dichter
am stumpfen Ende, ziemlich grob und fein hell schokoladenbraun und grau gefleckt.
Kein weiterer Nachweis von Paina bekannt. Ob doch nur A. grandis malaitae dort von
French gesammelt wurde? — k = 1,41.
Poeoptera lugubris. Nach BATzs (1930, S. 520) blaß blaugrau mit wenigen verstreuten,
sehr kleinen dunkelbraunen Fleckchen. Seine Abbildung (Ibis 1927, Taf. 11, Fig. 2, zu
S. 64) ist anscheinend mißglückt; denn wären die Eier wirklich so mitteldunkel kobalt-
blau wie diese, würden sie ganz aus der Reihe fallen. — k = 1,38.
Onychognathus (= Amydrus; —= Pyrrhocheira: — Hagiopsar). Charakterisiert durch
punktförmige Zeichnung auf schwach glänzendem, hellblauem, zum Ausblassen neigen-
dem Grund. Die recht kleinen bis nur wenig größeren Punkte sind dunkelbraun, zum Teil
fast schwarz und am stumpfen Ende verdichtet; sie lassen das spitze oft gänzlich frei.
Andere Stücke, aber wohl bei allen Arten dieser Gattung, tragen gleichmäßig lose ver-
teilte zarte, braune oder braunrötliche und vereinzelte lila Fleckchen, weniger punkt-
förmige. Ob ausnahmsweise, wie bei O. blythii, bei allen Arten ungefleckte Eier vor-
kommen, ist nicht bekannt.
Onychognathus walleri elgonensis. Blaßblau, (immer?) einfarbig. PRAED & GRANT
1973, S. 502).
Onychognathus nabouroup nabouroup (= Pyrrhochira). Blaß grünlichblau, spärlich
rötlichbraun gesprenkelt. — k = 1,46.
Onychognathus morio rueppellii (= Amydrus). V. ERLANGER sagt nur, daß die Eier
größer sind als die von Lamprotornis chalybaeus; aber KornıG (Katalog Bd. 3, S. 1038,
1932) beschreibt seine drei Exemplare als langgestreckt, blau mit starker rostbrauner
und violettaschfarbener Tüpfelzeichnung am stumpfen Ende.
Onychognathus morio morio (= Amydrus). Blaß grünlichblau, spärlich rötlich ge-
zeichnet (RoBERTS 1957, S. 401). NEHRKORNS Beschreibung (1910, S. 351) ‚‚meist sehr
38*
596 29. Ordnung
dunkelblau“ fand ich nirgends bestätigt. Die betreffenden Stücke werden zu Spreo
bicolor gehört haben, wie auch die von KuscHeL (Journ. f. Orn. 43, S. 330, 1895) be-
schriebenen dunklen ‚‚morio“. — k = 1,45. (Taf. 11, Fig. 3.)
Onychognathus blythii. Drei Eier im Britischen Museum (Cat. Brır. Mus. 1912,
S. 424) gleichen völlig denen von Sturnus v. vulgaris; aber ARCHER & GoDManN (1961,
S. 1411) finden 8 Eier der Archer-Sammlung aus Somalia indischrot auf blaß grünlich-
blauem Grund gesprenkelt. — k = 1,37.
Onychognathus tristramii (= Hagiopsar). — k = 1,36.
Onychognathus tenuirostris theresae. LYNeEs (1934, S. 111): Weiß mit roten Flecken.
Nach CnHarın (1954, S. 144) sind blaue, rötlich gefleckte Eier von L. H. Brown am
Mt. Kenia gefunden worden. 3 Eier aus derselben Gegend beschreibt DE BOURNONVILLE
(briefl. 1980) als hellgrundig wie die von T’urdus viscivorus und braun nach Art von
Parus major überall gefleckt. — k = 1,47.
Onychognathus albirostris. Nach BROWN & THOROGooD (Bull. Brit. Orn. Club 96,
S. 62, 1976) ziemlich breit oval wie O. tenwirostris, weniger wie O. morio morio. Das
stimmt mit den Maßen dieser Autoren nicht überein, und nach unserer Liste ist es
umgekehrt. Türkisblau mit kleinen, gut begrenzten, dunkelbraunen und nn.
Flecken, vor allem am stumpfen Ende. — k = 1,51.
Onychognathus salvadorii (= Galeopsar)? Die einzig bei JACKSON & SCLATER (1938,
S. 1296) beschriebenen, rauhschaligen, kalkweißen, rötlichbraun gefleckten, und ge-
flatschten Eier mit lila Unterflecken der Sammlung Archer gehören nach ARCHER
& GoDMAN (1961, S. 1416) zu Buphagus erythrorhynchus caffer. — k = 1,43.
Lamprotornis. Die Grundfarben sind zum Teil mehr blaßgrünlich als blau, zum Teil
aber auch hell himmelblau oder dunkler, die Flecke fast immer klein, oft punktförmig
rostrot oder dunkler braun, lila Unterflecke selten, die Eiform anscheinend öfter, als bei
anderen der Familie, stärker zugespitzt. Vielleicht legen die vier Arten der eigentlichen
Gattung Lamprotornis öfter (mevesii nur?) ungefleckte Eier im Gegensatz zu den zahl-
reichen, früher getrennt gehaltenen „Lamprocolius‘“-Arten. Die starke Größenschwan-
kung der Eier bei einigen Arten ist vielleicht geographisch bedingt.
Lamprotornis purpureiceps. Nach CHAPIn (1954, S. 164) blau mit brauner Fleckung. —
e.1,31.
Lamprotornis corruscus corruscus (= Lamprocolius). Cuugg (1914, S. 104) beschreibt
8 ziemlich glänzende blaßblaue Eier, wogegen RoBErTs (1957, S. 399) Spuren brauner
Zeichnung auf grünlichblauem Grund anführt. — k = 1,36.
Lamprotornis purpureus purpureus (= Lamprocolius). Grund blaßblau. Erhebliche
Größenvariation. — k = 1,34
Lamprotornis purpureus amethystinus. Blaßblau, fein rötlichbraun gefrickelt. —
k=:1;88:
Lamprotornis nitens phoenicopterus (= Lamprocolius). Blasser und dunklerer Grund
kommen vor, fast nur mit kleinen, gleichmäßig und wenig dicht stehenden braunen und
purpurroten Fleckchen (CuusgB 1914, S. 108). Auch einfarbig tief himmelblau. Die
irrtümlich mit 38,1 x 20,3 mm (k = 1,88!) angegebene sehr gestreckte Gestalt (PRIEST
1929, S. 142) wurde 1948 (id., S. 117) in 29,0 x 20,1 mm geändert, was mit unserem
k = 1,42 gut übereinstimmt.
Lamprotornis nitens culminator (= Lamprocolius). Grünlichblau, schwach rotbraun
gefleckt. — k = 1,33.
Passeriformes: Sturnidae 597
Lamprotornis chalcurus chalcurus (= Lamprocolius). Nur ein Gefangenschaftsstück
Nehrkorns lag vor; es ist sehr blaß und zeigt nur Spuren bräunlicher Flecke. — k= 1,59.
| Lamprotornis chalybaeus cyaniventris (= Lamprocolius). Variabel im Grundton, manch-
mal ungefleckt, meist purpurfarben oder umberbraun gefleckt (ARCHER & GoDMAN
1961, S. 1461). — k = 1,43.
Lamprotornis chalybaeus sycobius (— Lamprocolius). Himmelblau bis hell grünlichblau
mit blaßrötlichen und grauroten Fleckchen; manchmal sind die Eier nur mit zarten
Punkten lose bespritzt und also fast ungefleckt. DieGrößenvariation ist beträchtlich.
Die von Fischer im Massailand gesammelten Stücke messen nach KvscHeL (1895,
S. 330) 30—33 x 20—21 mm (k = 1,54), die-von Belcher und Walker (s. BELCHER,
Ool. Rec. 4, No 4,S. 10, 1924) gefundenen nur 25,5—28 x 18,5—19,5 mm. Nach PRIEST
(1929, S. 142) in S-Rhodesien 26,6 x 19,3 mm, grünlichblau mit wenigen rötlichen
Fleekehen. — k = 1,34.
Lamprotornis chalybaeus nordmanni. Grünlichblau, sehr fein braun und grau ge-
fleekt. _k- 1,50.
Lamprotornis chloropterus elisabeth (= Lamprocolius). Nach PRAED & GRANT etwas
kleiner als bei der vorigen Art. Die unter diesem Namen (chloropterus) (zum Beispiel
bei Priest 1929, S. 142) angeführten’ Eier gehörten wohl zu dem schwer unterscheid-
baren L. chalybaeus sycobius, da elisabeth nicht in Simbabwe (S-Rhodesien) vorkommt. —
KR 1.30.
Lamprotornis splendidus splendidus (= Lamprocolius). Meist heller, etwas grünlich
getönter Grund. Erhebliche Größenvariation. — k = 1,33.
ne splendidus bailundensis (— Lamprocolius). Nach WHITE (Ibis 1943,
S. 131) leuchtend blau, hell umber gesprenkelt, beim zweiten Ei auch geflatscht. Größe
von Turdus merula.
Lamprotornis australis (= Juida; — Chalcopsar). Nach VERREAUX (Journ. f. Orn. 7,
S.5, 1859) hellgrün (,L. burchellii“ Smith). Hoesch (HoescH & NIETHAMMER 1940,
S. 309) sammelte im Damaraland zwei Vierergelege, hell himmelblau, heller als Lampro-
fornis nitens phoenicopterus, mit kleinen purpurroten Flecken in spärlicher Verteilung,
nur am stumpfen Ende etwas zusammengedrängt, ein Ei fast ungefleckt. Priest (1929,
S. 142) sagt: Blaugrün mit wenigen ziegelroten Fleckchen. — k = 1,42.
Lamprotornis mevesii mevesii. Einfarbig blaß grünlichblau (BRookE, Bull. Brit. Orn.
Club 35, S. 140, 1965). — k = 1,37.
Lamprotornis purpuropterus purpuropterus. Mehr breit oval als bei L. australis,
L. mevesii und L. caudatus (k — 1,32). NEHRKORNS Stücke aus NO-Afrika sind glanzlos,
einfarbig himmelblau mit zarten, erhabenen Querwellen in der Oberfläche. Ohne solche,
sind meine Stücke ebenso, wiegen aber nur halb soviel, da aus der Gefangenschaft.
1938 beschreibt PAGET-WILKEs (Ibis, S. 126) Eier aus NO-Uganda ohne Maße als
länglich, blaß blaugrün, oft mit rostigen Blattern und kleineren Fleckchen, in Farbe,
Größe und Gestalt anders als die ‚„„Lamprocolius“‘-Gruppe. Dagegen fand Heuglin (nach
KvscHeL 1895, S.330) gerade große Ähnlichkeit mit Lamprotornis chalybaeus, also
ebenfalls leicht gefleckten Eiern.
Lamprotornis caudatus. Nach KvscHEL (1895, S. 329) glatt (wie alle Lamprotornis-
Eier), glänzend ungefleckt grünlichblau. Ein ebensolches fand in neuerer Zeit LyneEs
(Ibis 1924, S. 656). Nehrkorns Exemplar besitzt aber gleichmäßig verteilte, zarte, blaß-
purpurbraune Pünktchen und Fleckchen. — k = 1,39.
598 29. Ordnung
Cinnyrieinclus leucogaster verreauxi. Nach CHupg (1914, S. 103) und BELCHER (1930,
S. 285) blau mit runden, braunen und lila Flecken, die manchmal kranzförmig geordnet
sind. PRIEST (1948, S. 115) nennt die Eier bläulichgrün mit wenig rotbrauner Zeichnung,
Roßerrs (1957, S. 397) und James (1970, S. 199) geben auf blaß grünlichblauem Grund
nicht nur purpurne Unterflecke und rötlichbraune zerstreute Flecke, sondern auch
Flatschen an. Von einer Häufung am stumpfen Ende spricht Vincent (1949, S. 322),
aber nach JACKSON & SCLATER (1938, S. 1274) waren die wenigen kleinen Spritzer und
Flecke eines Zweiergeleges aus Eldama (Kenia) ziemlich gleichmäßig verteilt. —
k= 1,41.
Speculipastor bicolor. Oft mehr grünlicher als blauer Grund. Am einen Ende etwas
dichter, sonst ziemlich gleichmäßig, mehr braun als rot, feiner und auch gröber ge-
fleckt, unseren Amseleiern (Turdus merula) nach v. ERLANGER (1905, S. 708) zum Ver-
wechseln ähnlich. Die zahlreichen rotbraunen Frickel neigen nach ARCHER & GODMAN
(1961, S. 1407) zur Zonenbildung um das stumpfe Ende. BELCHER (Ool. Rec. 23, S. 39f.,
1949) fand die Eier viel heller als die von Spreo albicapillus und Cosmopsarus regius. In
einem Fünfergelege war ein fast ungeflecktes Ei. — k = 1,42.
Neocichla gutturalis angusta. Nach PRAED & GRANT (1963, S. 444) waren die auf
Haar- oder Blätterpolster in einer Baumhöhle gefundenen Eier weiß und glatt, glanzlos,
reichlich mit rötlichbraunen Ober- und graublauen Unterflecken gezeichnet.
S’preo fischeri. Die Eier dieser Gattung, ausgenommen die von S. hildebrandti, besitzen
die dunkelste Grundfarbe, tiefblau; die von S. fischeri sind denen von Turdus philomelos
ähnlich (v. ERLANGER 1905, S. 706). — k = 1,40.
Spreo bicolor. Auf etwas rauher, schwach glänzender Schale sind nur kleine, hell-
braune Fleckchen, zum Teil bloße Punkte, spärlich verteilt, sehr oft ganz fehlend. Die
Eier klingen an schwächst gezeichnete, dunkelblaugrundige Drosseleier (Turdus) an.
Zwei abnorme Eier (James 1970, S. 200): 24,4 x 17,1 und 22,7 x 14,0 mm wurden nicht
in die Liste übernommen. — k = 1,42.
Spreo albicapillus. Ähnlich den Eiern von Turdus philomelos, nach ARCHER & GODMAN
(1961, S. 1418) wie purpurrot gefleckte Eier dieser Art aus England. Nach BELCHER
(1949, S. 40) steht die braune Fleckung auf Prunella modularis-ähnlichem Grund. —
ki 1,40.
Spreo superbus. Einfarbig tiefblau wie Prunella modularis, sehr glänzend, tiefer blau
gefärbt als die Eier von S. hildebrandti shelleyi und die von Lamprotornis chalybaeus ;
letztere sind auch größer (ARCHER & GoDMAN 1961, S. 1420). — k = 1,36.
Spreo p.pulcher. Glanz erheblich, Flecke scharf begrenzt, meist klein bis mittelgroß,
rundlich, violett und dunkelbraun (nicht schwarz), vorwiegend spärlich am stumpfen
Ende, manchmal aber auch reicher und weiter verbreitet. Erinnert an T’urdus philomelos,
ist genau wie Zoothera naevia von Nordamerika, nur kleiner, und sehr ähnlich Telophorus
zeylonus bei den Würgern. — k = 1,43.
S’preo pulcher rufiventris. Ebenso ähnlich Singdrossel-Eiern wie vorige. — k = 1,42.
Spreo hildebrandti shelleyi. Nach ARCHER & GODMAN (1961, S. 1423) einfarbig türkis-
blau, heller und gewöhnlich schmaler als S. superbus, gelegentlich mit einem undeut-
lichen braunen Sprenkel. — k = 1,43.
Spreo hildebrandti hildebrandti. Nach PRAED & GRANT (1955, S. 713) einfarbig weiß,
etwas glänzend. Ein Gelege der Kreuger-Sammlung ist zwar von R. KREUGER selbst als
fraglich bezeichnet worden, aber von J. G. Williams 1940 gesammelt, von dem auch das
Passeriformes: Sturnidae 599
rein weiße Ei der Sammlung DE BOURNONVILLE (briefl. 1981) stammt. Es ist auf weiß-
liehem Grund streifen- und fadenförmig mit zum Teil zusammenfließenden lavendel
Wirrlinien und einzelnen kleinen braunen Flecken gezeichnet und wird als fragliches Ei
abgebildet. Sollte es nicht richtig bestimmt sein, käme vielleicht das noch unbekannte
von Coracina caesia pura in Frage, aber J. TERHIVUO, der es in der Kreuger-Sammlung
verglich, steht diesem Gedanken ablehnend gegenüber. — k = 1,45. (Taf. 11, Fig. 4.)
Cosmopsarus regius regius. Nur die von v. Erlanger im Land der Gurra (v. ERLANGER
1905, S. 711) und die von Golding in Somalia gesammelten Stücke wurden mir bekannt.
Auf stark glänzendem Grund von mehr hellgrünlicher als blauer Farbe stehen spärliche,
sehr blaß rost- und lehmfarbene kleine Fleckchen. Ganz wie zart punktierte Ämseleier
(Turdus merula). — k = 1,48.
Saroglossa aurata (— Hartlaubius). Mehr elliptisch geformt als die meisten anderen
Eier der Familie, fast glanzlos, blaß grünlichblau. Manche haben nur kleinere, ziemlich
dichte braune Fleckchen und Punkte überall, auf anderen Eiern stehen mehr an einem
Ende und fließen dort zum Teil zusammen. Die Eier erinnern an Zwergeier von Turdus
merula. — k = 1,39.
Saroglossa spiloptera. Gestreckt oval (k = 1,40), nur wenig glänzend, auf hellbläu-
lichem, selten (nach Baker 1933, S. 514) blaß steinfarbigem oder warm grünlichblauem,
zum Ausblassen neigendem Grund mehr oder weniger gleichmäßig verteilte, ziemlich
gleichgroße, rostfarbige oder kastanienbraune bis purpurbraune und lilagraue Flecke,
beide in fast gleicher Zahl und von mittlerer Größe. Gelbgrünlichweiß durchscheinend.
Im Gesamteindruck paßt dieses Ei gut zu dem einiger anderer Sturniden, aber auch zu
manchen Timaliidae, in deren Familie diese Art früher stand. (Taf. 11, Fig. 5.)
Creatophora cinerea (= Dilophus). Vorwiegend einfarbig blaßbläulich bis bläulichweiß,
nach Rogerts (1957, S. 396) blaßgrünlichblau, nach James (1970, S. 200) zwei Eier
fast rein weiß. Etwa jedes dritte oder vierte Ei trägt zarte hellbraune Fleckchen am
stumpfen Ende. Bei Burao in Somalia dagegen war die Mehrzahl der Eier fein lila
und sepia gefleckt (PARKER, Ool. Rec. 37, S. 42, 1963). Der blaue Ton blaßt oft voll-
kommen aus, so schon 1—2 Tage, nachdem die Schalenstücke aus seitlichem oder
selten steilem, oberem Ausgang des Kugelnestes auf den Boden gefallen sind. — Bei
Heuschreckenbefall sind mehrere tausend Nester in einer Kolonie, gewöhnlich nur
bis 400, von denen oft zwei bis acht in einer einzigen Dornzweig- oder Stengelmasse
vereint sind, aber viele (die Hälfte?) nicht belegt werden, da sie wohl von jungen
Paaren erbaut und bewohnt sind (LIVERSIDGE, Ann. Cape Prov. Mus. 1. S. 76—77,
1961). — k = 1,38.
Sturnus senex (= Sturnornis). Die Eier dieser wohl als Ceylon-Rasse von S. mala-
baricus aufzufassenden Art (ALı & RıpLey 1972, S. 159) sind einfarbig blaßblau, aber
wenig bekannt. — k = 1,27.
Sturnus malabaricus blythii, malabaricus und assamicus (= Sturnia). Meist satter hell-
blau als $S. vulgaris. — k = 1,35; 1,31 bzw. 1,31.
Sturnus malabaricus nemoricola (= Sturnia). Hier fällt das für einen ausgesprochenen
Höhlenbrüter hohe relative Schalengewicht (7,8%) auf, um so mehr, als danach gerade
die beinahe kleinste Starenart (Sturnidae) die verhältnismäßig dickste Schale besitzt,
was der Regel zuwiderläuft. Da sich diese Feststellung nur auf wenige gewogene Eier
stützt, könnte es sich allerdings um zufällig besonders schwere Stücke handeln. Sonst
ließe sich vermuten, daß diese kleinste Art sich aus einer größeren entwickelt habe,
wobei die Schalenstärke noch nicht in entsprechendem Maße zurückging. Diese bleibt
länger konstant als die Menge des abgesonderten Eischalenkalks, wie die gleich-
600 29. Ordnung
bleibende Schalendicke bei Zwerg- und Rieseneiern lehrt. BARER gibt für 14 Eier an:
24,0— 28,0 x 17,4— 20,4: D,, = 25,6 x 19,0 (1933, S. 521). Der Vogel ist etwa sö groß
wie die Nominatform. Darum dürften sich in dieser Serie soviel abnorm große Eier
befinden, daß sie nicht in die Liste übernommen wurde. — k = 1,37.
Sturnus erythropygius andamanensis und erythropygius (= Sturnia). Wie vorige. —
k = 1,37 bzw. 1,40.
Sturnus pagodarum (= Temenuchus). Wie vorige. — k = 1,32.
Sturnus sericeus. Nach CourTo1s (1912, S. 55, siehe La ToucHE 1926, S. 284) ziemlich
blaß blau. — k = 1,39.
Sturnus philippensis (= Sturnia). Wie vorige. — k = 1,42.
Sturnus sturninus (— Sturnia). Matt blaßblau, aber auch dunkler. — k = 1,39.
Sturnus roseus (— Pastor). Einfarbig bläulich weiß bis fast rein weiß. Abnorm blaß-
olivbräunlich (s. S. 592). — k = 1,37. (Taf. 11, Fig. 6.)
Sturnus vulgaris faroensis. Heller als die übrigen Subspecies außer humii. Die einfarbig
hell grünlichblauen Eier vermitteln zwischen den. Rosenstar-Eiern (S. roseus) und den
meisten übrigen von Sturnus, die dunkler sind. — k = 1,32.
Sturnus vulgaris zetlandicus. Wie vulgaris. — k = 1,41.
Sturnus vulgaris vulgaris. Einfarbig grünlichblau. Nach der Untersuchung von
411 finnischen Eiern kamen OJANEN, ORELL & VÄISÄnEN (Orn. Fenn. 55, S. 60-68,
1978) zu dem Ergebnis, daß die durchschnittliche Eilänge in Dreiergelegen niedriger
ist als in größeren Gelegen; sie steigt signifikant von 28,3 bis 30,0 in Siebenergelegen.
Dabei ändert sich das Achsenverhältnis k; es steigt vom Vierer- zum Sechsergelege von
etwa 1,36 auf 1,41, ist aber größer beim Dreier- und kleiner beim Siebenergelege. Trotz-
dem steigt G vom Dreier- zum Vierer- und wieder vom Sechser- zum Siebenergelege an.
Es fanden sich übrigens keine Größenunterschiede zwischen Eiern von Finnland, Groß-
britannien, Mittel- und Ost-Europa.
Vielleicht legt die Azoren-Population, .die. man als grandis unterschieden hatte, Eier
vom hellen Typ der faroensis-Eier. 53 Azoren-Eier weichen mit 29,8 x 21,2 mm, G=7,0g.
(DE CHavienY & MayAUD, Alauda (2) 4, S. 304ff., 1932, die auch 2 rein weiße Eier
sahen) ebensowenig wie die 4 Eier der nicht anerkannten Rasse graecus Tschusi aus
Griechenland mit 29,8 x 21,1 = 0,46 g (MakartscH 1976, S. 355, d = 0,124, G = 7,08,
Rg = 6,6%) von den Gesamtmaßen und dem Gesamtgewicht ab. Nach W. SCHNEIDER
(Der Star, Sturnus vulgaris, Neue Brehm-Bücherei 248, 1960, S. 38) maßen 216 Eier der
Frühbrut aus der Gegend von Leipzig 29,9 x 21,2, 134 der Spätbrut 29,6 x 20,7 mm. —
k = 1,40.
Über ‚„vorgetäuschte‘‘ Fleckung s. u. bei Sturnus sinensis (8. 601). Ob die Fleckung
bei 7 von 19 Sturnus vulgaris-Gelegen aus Lawrence, Kansas (Jacksos, Bird-banding
41, S. 308— 310, 1970) ebenfalls unecht war?
Sturnus vulgaris tauricus und purpurascens. Wie vulgaris. — k = 1,32. (Taf. 11,
Fig. 7.)
Sturnus vulgaris caucasicus, nobilior, poltaratskyi und porphyronotus. Wie vulgaris. —
k = 1,39; 1,39; 1,42 bzw. 1,41.
Sturnus vulgaris humii. Hell wie faroensis, aber nicht nach BAkER (1933, S. 516),
nach dem auch ein rein weißes Gelege bekannt ist. — k = 1,40.
Passeriformes: Sturnidae 601
Sturnus vulgarıs minor. Wie vulgaris, nach BAKER aber vielleicht etwas heller als
humii (1933, S. 517). — k = 1,32.
Sturnus unicolor. Wie S. vulgaris vulgaris. — k = 1,41.
Sturnus cineraceus (= Spodiopsar). Dunkler als die vorhergehenden vier Arten. —
k = 1,40.
. Sturnus contra contra, superciliaris, floweri und jalla (= Sturnopastor). Wie 8. cine-
raceus. Nach NAarRAnG, TyAcı & LamBA (Journ. Bombay Nat. Hist. Soc. 75, S. 1173,
1980) kann der blaue Farbton bei contra gelegeweise verschieden ausfallen. — k — 1,39;
1,34; 1,34 bzw. 1,40.
Sturnus nigricollis. In einem Gelege dieser zum dunkleren Typ gehörigen. Art -war
nur ein Ei fleckenlos, zwei trugen einige schwarze Flecke, das vierte aber schwärzliche
und purpurne Flatschen (BAkzR 1933, S. 524). — k = 1,40.
Sturnus burmanicus burmanicus und a 5. melanopterus melanopterus
und Zricolor (= Gracupica). Ebenfalls zum dunkleren Typ rechnend. — k = 1,34;
1,29; 1,41 bzw. 1,40.
Sturnus sinensis (= Sturnia). Im Gegensatz zu den vorigen blaß grünlichblau wie
S. vulgaris. Ausnahmsweise kommen etwas dunklerer Grund und einige schwarze
Punkte vor, so in der Nehrkorn-Sammlung (Amoy, Swinhoe coll.), auch mit grauen
Unterflecken, wie bei einem Stück der Berliner Hauptsammlung aus gleicher Quelle.
—_ k-— 1,39.
Über einige Pigmentflecke auch bei Acridotheres albocinctus, über die kein Zweifel
herrscht, darf nicht vergessen werden, daß die meisten, wenn nicht alle Angaben
über Flecke bei Sturnus und Acridotheres auf Beschmutzung durch Insektenkot zurück-
gehen. So bei einem gleichmäßig punktierten Gelege von S. vulgaris in der Sammlung
Behrens. Die zunächst verblüffende ‚„Fleckung‘“ erwies sich als leicht abwaschbar.
Anomal weiße Gelege wurden bei S. vulgaris vulgaris wiederholt gefunden, so zwei
deutsche, jetzt im Berliner Museum. Ein blaßolivbräunliches von 8. roseus liegt im
Britischen Museum. Wenn es sich bei diesem nicht um künstliche Verfärbung der
Schalenhaut infolge von Alkali-Benutzung beim Entleeren handelt oder durch Fäulnis
des Inhalts, würde einer der seltenen Fälle vorliegen, in denen aus noch unbekannter
Ursache die normalerweise grüne Farbe durch eine bräunliche ersetzt ist, wie das bei
Eiern von Corvus, Fringilla und Carduelis sich zuweilen findet, auch in meiner Samm-
lung. Solche Anomalien mit dem Ausfall des Oocyans zu erklären, würde die Fälle nur
mit anderen Worten beschreiben. Das Kausalitätsbedürfnis fragt doch gerade nach
der Erklärung dieses Ausfalls. Der umgekehrte Fall findet sich viel häufiger (Cyanismus).
Die jetzt unter Sturnus vereinten Arten legen, mosaikartig verteilt, hellere oder
dunklere Eier, wie gezeigt wurde. Die hellsten zeichnen die ehemalige Gattung Pastor,
etwas dunklere die Gattungen Sturnornis (?), Sturnus und zwei heute weit getrennt
stehende Arten der ehemaligen Sturnia, Sturnus sturninus und 8. sinensis, aus. Auch .
die durchaus nicht immer gleich aussehende dunklere Tönung der übrigen Arten erlaubt
keine oologische Trennung der muheren Gattungen, die demnach allenfalls für Pastor
möglich erscheint.
Leucopsar rothschildi. Meist etwas dunkler und stärker blau als bei Sturnus vulgaris‘
(SCHIFTER, briefl. 1983). Das Durchschnittsmaß von x Eiern beträgt nach SIEBER
(Voliere 5, S.125—128, 1982, fide SCHIFTER) 30,8 x 22,3 mm, was ein „besseres“ k = 1,38
ergibt, und nach den Maßen derselben Autorin (Gef. Welt 101, 8.63 —64, 1977) schwanken
sie von 23—32%x19—24 mm. Als Frischvollgewicht wurde damals 5—6, in der neueren
Arbeit 8,2 & angegeben. — k = 1,43.
602 29. Ordnung
Acridotheres tristis tristis und melanosternus. Dunkel taubenblau. — k = 1,39 bzw.
1,36.
Acridotheres ginginianus. Teils dunkel, teils heller taubenblau. — k = 1,32.
Acridotheres fuscus mahrattensis und fuscus (— Aethiopsar). Wie A. tristis, aber
zum Teil wohl etwas heller. — k = 1,39.
Acridotheres fuscus javanicus (— Aethiopsar). Auf einem Ei des hier abgebildeten
Zweiergeleges befinden sich nach TERHIvvo (briefl. 1981) sehr schwache schatten-
ähnliche Zeichnungen. — k = 1,46. (Taf. 11, Fig. 8.)
Acridotheres fuscus cinereus. Nach HELLEBREKERS (briefl. 1975) glänzend hell bläulich.
— k= 1,51.
Acridotheres grandis (— Aethiopsar). Wie A. fuscus. Die beiden Eier der Nehrkorn-
Sammlung von S-Burma (NEHRKORN: Burma), eins als albocinctus bezeichnet, dürften
zu A. t. tristis gehören (stehen dort aber nicht in unserer Liste), sind jedenfalls mit
33,2 x 21,0 = 0,37 g; 30,0 x 22,5 = 0,52 g für A. grandis zu groß. — k = 1,41.
Acridotheres albocinctus (— Aethiopsar). Dunkle Eier, aber nach Baker (1933, S. 533)
in der Serie wohl etwas heller als A. grandis-Serien. Einzelne hellbraune Flecke finden
sich nach derselben Quelle auf etwa einem von 30 bis 40 Eiern, aber selten bei allen
Eiern eines Geleges (l.c., S. 534), jedoch als 4—6 sehr schwache schattenähnliche
Flecke auf den beiden Eiern des hier abgebildeten Geleges (TERHIVUO, briefl. 1981),
dessen deutlicher Fleck allerdings weggedacht werden muß. — k = 1,31. (Taf. 11,
Fig. 9.)
Acridotheres cristatellus cristatellus, formosanus und brevipennis. Wenigstens die
beiden ersten Rassen kommen sowohl mit helleren als auch mit dunkleren Eiern vor;
von brevipennis ist kein Maß bekannt. — k = 1,44 bzw. 1,41.
Ampeliceps coronatus. Blaßblau, blasser als Sturnus malabaricus und stärker BlanzemsE
— k = 1,32.
Mino dumontii kreffti. Auf fast glanzlos grünlichblauem Grund sehr blasse braunrote
und verloschen graue Flecke mittlerer Größe, also den beiden folgenden Gattungen
recht ähnlich. Nebenbei bemerkt, war ebenso ein von Gerd Heinrich auf Celebes
aus dem Vogel geschnittenes Ei des parasitischen Kuckucks Eudynamys scolopacea
melanorhyncha (Bd. I, S. 572). — k = 1,44.
Sarcops calvus calvus. Ähnlich der folgenden Gattung Gracula. Blaßblau, überall
oder mehr am einen Ende spärlich, aber ziemlich scharf mitteldunkel rostbraun, blaß-
rotbraun und een gefleckt. Meist stehen die Flecke weit auseinander. —
k = 1,42.
Sarcops calvus melanotus. Die ‚‚calvus‘‘-Stücke bei Nehrkorn und im Museum Berlin
entstammen der Sammlung KUTTERS (Journ. J. Orn. 31, S. 313, 1883) und kamen
aus SO-Mindanao. Eines dieser liegt im Britischen Museum. — k = 1,39.
Gracula ptilogenys (= Eulabes). Wie @. religiosa. — k — 1,45.
GFracula religiosa indica (= Eulabes). Wie alle Arten dieser Gattung den Eiern von
Sarcops ähnlich, zuweilen etwas tiefer blau, mit Neigung zum Ausblassen. Flecke
mitteldunkel rotbraun, blaßrotbraun, lila, wie bei Sarcops, auch tief schokoladenbraun
oder fast schwarz, zum Teil zusammenfließend. Oft ist ein Ei des Geleges stärker oder
schwächer als die übrigen gezeichnet (Baker 1933, S. 507). Gegenüber Sarcops über-
wiegen aber in dieser Gattung Gelege, die nur hellere, meist größere und wie abge-
waschen wirkende Flecke tragen. — k = 1,38.
Passeriformes: Sturnidae 603
Gracula religiosa intermedia (= Eulabes). Wie vorige (s. die Bemerkung bei Mino,
S. 602). Der Car. Brit. Mus. gibt für Eier aus Tenasserim so kleine Maße und eine
so kleine Abbildung (1912, S. 419, Taf. 18, Fig. 13), daß sie für den großen Vogel als
ganz abnorm gelten müssen oder falsch bestimmt sind, obwohl alle vier von Bingham
gesammelt wurden: D, = 28,8 x 19,6(28,2—29,5 x 18,3—20,1) mm. Aber es gibt
vom selben Fundort, Maplay Choung, Tenasserim, und ebenflals von Bingham, im
Britischen Museum zwei weitere, normal große Eier (CAT. BrIT. Mus. 1912, S. 418,
javanensis genannt), die in unserer Liste bei intermedia stehen. — k = 1,41.
Gracula religiosa andamanensis und religiosa. Wie vorige (BAKER 1933, S. 509).
— k = 1,39 bzw. 1.41.
Scissirostrum dubium. Von dieser Art wurde nur bekannt, daß Platen (laut NEHRKORN
1910, S. 352, in „‚Venezuela‘‘, errore für N-Celebes) einfarbige blaue Scherben von Eiern
unter einem Nistbaum fand.
Buphagus africanus africanus. Rein oologisch betrachtet, hat Buphagus nicht die
geringste Beziehung zu den Sturnidae, nach SCHÖNWETTER. [Er steht allerdings ın
der Liste der Färbungen (S. 592) bei Aplonis metallica, und auch sonst sind wohl weniger
die Eier als Morphologie und Lebensweise das Absonderliche an den Madenhackern
und ihrer Unterfamilie. Auch das Nest in Baumhöhlen, bei B. erythrorhynchus auch
in Fels- und Mauerhöhlen sowie an Erdhängen und unter Dächern, das aus Gras und
Stroh als Unterlage gebaut und meist mit Haaren (wie bei vielen Glanzstaren) gepolstert
wird, bietet in dieser Familie nichts Unmögliches. Hrsg.] SHUEL (Ibis 1938, S. 478)
fand in N-Nigeria ein Dreiergelege und bildet ein Ei ab. Nach ihm ist die Grundfarbe
weiß, ziemlich schwer rotbraun und lila zarter und gröber gefleckt. Die Abbildung
(Tafel IX, Fig. 14) zeigt jedoch nur weitverstreute kleinste fuchsige Punkte, dazwischen
einzelne größere, die aber unter 1mm Durchmesser bleiben, sowie oben und unten
je 2 oder 3 lilagraue, unregelmäßige Fleckchen, die wie abgetupft erscheinen. Gestalt
vollkommen elliptisch ohne Verjüngung (k = 1,34). Die Maße erfährt man nur durch
Ausmessung des Bildes, 23,5 x 17,5 mm (G = 3,8g). Dieses Bild erinnert sehr an das
durch VAUGHAN & Jones (Ibis 1913, Tafel V) gegebene von einem ausgeschnittenen
Ei des Cuculus micropterus (26 x 19 mm, siehe Bd. I, S. 547), auch an das nicht ganz
so ähnliche, durch Bares (1930, S. 527) ausgeschnittene Ei von C'uculus clamosus
gabonensis (23,5 x 17,0 mm, weiß mit hellgrauen und braunen Spritzern, s. Bd. I,
S. 584), sowie an ein durch HozscH ebenfalls ausgeschnittenes von ('uculus clamosus
(grauweiß mit kleinen hellbraunen und violettbraunen Punkten und Flecken, Bd. I,
S. 546). Da das Gelege, das SHUEL sammelte, kaum aus drei Cuculus-Eiern bestanden
hat, dürfte es richtig bestimmt sein. ;
Auch VIncEentT (1949, S. 324) sammelte, im Umvuma-Bezirk von Simbabwe (S-
Rhodesien), 2 Eier, die auf weißem Grund vor allem am stumpfen Ende dunkel kastanien-
braun und dunkel- sowie hellviolettgrau gefleckt und bespritzt waren; eins von ihnen
trug zusätzlich wenige hell kastanienbraune Flatschen. Auf mattweißem Grund ist das
Zweiergelege in der Sammlung DE BOURNONVILLE (briefl. 1981) mit kleinen braunroten
Flecken besetzt, so daß es Ploceus zanthops-Eiern gleicht. Und schließlich passen die
acht trübweißen Eier der Sammlung KREUGER in Helsinki mit kleinen und ziemlich
großen dunkel schokoladenbraunen und anders braunen Flecken gut dazu. Sie stimmen
ganz mit denen der nächsten Art überein. Das Gelege aus Natal ist stärker gefleckt
als die beiden aus Gambia (TerHıvuo, briefl. 1981).
Es handelt sich also überall um mattweiße (oder weiße) Eier, die braun bis braunrot
(und lila oder lilagrau) gefleckt sind. Im Gegensatz zu diesen gefleckten Eiern werden
immer wieder, bis 1970 (PRAED & GRANT, S. 308) einfarbig blaß blaue oder weiße
dem Gelbschnabelmadenhacker zugeschrieben. Zunächst dürfte STARK (1900, S. 20)
604 29. Ordnung
von sehr blaß blauen Eiern geschrieben haben, und HARTERT muß sich auf ihn ver-
lassen haben, als er mir sagte, die Gattung lege solche Eier. — [MrrLLer-Hossıs (Rev.
Frang. d’Orn. 4, S.151f., 1920) hat laut Cuarın (1954, S. 178) ebenfalls einfarbige
Eier vom Senegal angeführt. Obwohl Nestbeschreibung und Gelegegröße bei STARK
in Ordnung sind, ist „‚Starks Ei‘ wahrscheinlich abzulehnen.
Seine Maße sind einfach zu groß: 1,15% 0,9inch (29, 2 x 22,9 mm). Statt dessen
schreibt PRıEsT (1929, S. 107) 0,15 x 0,9 inch, aber später (1948, S. 118) 29 x 22 mm,
von PRAED & GRANT (l. ce.) mit 29x 21 mm wohl übernommen. RoBeErTs (1957, S. 402)
meidet diese sicher falsche Größenangabe, bleibt aber auffallenderweise bei einfarbig
weißen oder sehr blaß blauen Eiern, die manchmal tief kastanienfarben, braun
und violett gefleckt seien. Für 5 Eier führt er 24,8x 17,4(23,4— 26,6 x 16,6— 18,0) mm
an, was zur Vermeidung mehrmaliger Angaben nicht in unsere Liste übernommen
wurde. Ob bei STARK nicht wenigstens in den Maßen eine Verwechselung mit Creato-
phora vorliegt?
Das Vorkommen einfarbig sehr blaß blauer Eier ist wenigstens zur Zeit abzulehnen,
wenn auch als Abnormität möglich. Hrsg.] — k = 1,38. (Taf. 11, Fig. 10.)
Buphagus erythrorhynchus erythrorhynchus.. AÄRCHER & GoDMAN (1961, 8. 1426)
führen sehr rauhe, kalkig weiße und um das stumpfe Ende kräftig leuchtend rotbraun
und lila gefleckte und geflatschte Eier an.
Buphagus erythrorhynchus caffer. Da wohl keine Maße von der Nominatform vorliegen,
behandeln wir die bei PETERS allerdings nicht anerkannte Rasse caffer genauer. CHUBB
(1914, S. 104) beschreibt drei Dreiergelege aus Natal in der Millar-Collection des
Durban Museums, eins schon am 27. XI. 1898 genommen. Diese Eier sind oval, auf
leicht rosa getöntem, weißem Grund überall gleichmäßig bedeckt mit zahlreichen kleinen
dunkelroten und lavendelblauen Fleckchen. Nach GILL (1936, S. 41) sind die Gelege
aus Natal und Transvaal bläulichweiß mit dunkelrötlichen kleinen und größeren
Flecken. PAGET-WILKES (Ibis 1938, S. 127) beschreibt diese Eier ohne Maße, als oval,
etwas grobschalig, weiß mit überall verteilten hellbraunen und leberfarbigen. kleinen
Flecken. Gewöhnlich 3 Eier im Gelege, gefunden in NO-Uganda, wo der Vogel nicht
selten sei. Bei Onychognathus Me ar (S. 596) war schon von ähnlichen Eiern die
Rede.
CHarın (1954, S. 178) faßt abweichend so zusammen: Rahmweiß mit gleichmäßiger
dunkel purpurfarbener, blaß lila und dunkel rotbrauner Fleckung. Anders hört sich
das bei James (1970, S. 201) an: Spitzoval, weiß, ziemlich schwer rötlichbraun gefleckt
und geflatscht, mit auffälligen blaßpurpurnen Unterflecken. RoBERTS (1957, S. 403)
gründet die widersprechende Beschreibung des Grundes als rosaweiß wohl auf CHuBgB
(siehe oben); die bei ihm angeführte Fleckung stimmt mehr mit der bei Cuarıs überein.
DE BoURNoNVILLE hat ein matt weißlich rahmfarbenes Zweiergelege, dessen Ober-
fläche nicht rauh ist, aber kleine und große, braune und braungraue Flecke wie Turdus
viscivorus-Eier trägt. Ein langgestrecktes Ei ist dabei: 29,8x 17,1 mm. Es kam als
abnorm nicht in die Liste. Das Gelege der Kreuger-Sammlung stimmt, wie oben gesagt,
mit den weißen und gefleckten von B. a. africanus überein. Zusammengefaßt: Bisher
sind weißliche Eier mit bläulichem, rahmfarbenem oder rosa Anflug und mit Fleckung
gemeldet.
Die zahlreichen Eier bei ROBERTS werden in einer Sonderzeile unserer Liste angeführt,
sie mit den übrigen zum Teil identisch sein werden.
daNun wieder die einfarbigen Eier: STARK (1900, S. 21) beschreibt die 4—5 Eier des
Geleges als bläulichweiß. Sein Maß 1,12 x 0,85 inch (28,4 x 21,6 mm) würde ein G
von 6,9 g ergeben und erscheint zu groß. Diese Beschreibung paßt aber genau auf den
dortigen Star COreatophora ceinerea. Auf STARK geht sicher das Maß bei Jackson & ScLa-
TER (1938, S. 1304) 28,4 x 21,6 bei Gelegen von 3—5 Eiern zurück, wohl auch das
Passeriformes: Sturnidae 605
bei PRAED & GRANT wenigstens bis 1963 (S. 463) zu findende, obwohl etwas rätselhafte
von etwa 30x 21,5 mm. Doch führen die letztgenannten Autoren (1970, S. 505) bei
gleichbleibender Beschreibung als Größe nun etwa 23x 17mm an, was wohl auf
ROBERTS zurückgeht. Auch PRIEST wechselt von STARK, den er 1929 (S. 107) mit etwas
falschen Zahlen zitiert (1,12x 0,35 inches), 1948 (S. 118) zu einem anderen Autor, zu
CHUBB, mit 24—23 (sic) x 17 mm.
Ungefleckte, einfarbig blaß bläuliche Eier (STARK) sind demnach hamlehnen. Eine
Sonderstellung von Buphagus kann sich nicht auf Rauhschaligkeit stützen, da solche
auch von Gracula religiosa indica (BAKER 1933, S. 507) bekannt ist. — k = 1,38. (Taf. 11,
Fig. 10.)
29. Ordnung
606
(197479 Mnuoyag
‘MONSOLL ‘A "DLIUOH “UIOYIUON
uodunpwurg ‘90F 'S ‘6L8T NYOMYHAN)
[(BIeH 9 yosurg) vapıımy %1r'9 99 zır°0 | 070 E78 #87 3 18°0— 880 = 033308 X L'TE—-0'53 EI
SIUAODN) :9JOLIO NYMOMYMHYN 19q] BUIUSBUIR A N
(uourjoaey)) odeuog (4X, L, ayaıs) BSBHNSL-EYNRL Ssısuadpuod »ondo swuogdy
(1999 MUoyaS "n uynH uadunjwurs
L(e-r)z/? :ypueaıg] ‘7967 zanvag 'ZE6T ‘F6E'S ‘L MOL
(gqny ‘VNIHSYWVA “SsaW "LIU “LVY) :0061 7
‘“eyoyg ‘uedreg ‘wend ‘nejeg UOA do) SIT 'S ‘48687 ‘G '[00Z "AON “IMALAVH)
(oresnyy pun odwuog doyne) 3 cH0—FE°0 = 0°E3— 36T X 0EE-8'57
uourjoIg,) 'n uougriep ned | %8'9 69 0170 170 013 L’62 vureÄtwon ?mpoıny nondo sıwuogdy LF
(813 'S ‘6067 HLHON)
9MOH PIOT Dummy 86T 0/67 X 06° —6'97
9]19Z OBLIOA ’S mosn — ale) — — &‘61 617 "yyeW DUDIMMY za! wosn wosn sıuopdy F
(MONSOLT, "A “urp1ogf "SAW *uIoyıIyoN)
3 890-120 = 96T —0°61 X 8'837 —9‘98
yropon | %r‘C #q £600 | 680 #6T 312 pInoH wosn/ vosn/ sıuogdy €
(u1oyıyoN dung
-wuweg San "LIug "LVO :OPL 'S “TE6T
NNVNAUANNLT :90P 'S ‘618T NYAOMYHAN)
3 98°0-T8°0 = L'08-—-8{LIX 787 —0'97
(ujosuJ voweg) mearg pun npodn | %c‘9 Fake) erro | FE0 161 8‘9z (OJLOT) S1.450.004q sısuongny swuogdy 9
[urpaog ‘sup 'n
UIOYIUON Sunjwweg !(nA9T IMA) OPT 'S
“TE6T NNVWAMHWNNLTL, "Saw "LIT “ıvo]
(ujosuf 3 98°0-68°0 = 808-881 X L’LZ 078
om] 'n URL-oug dogne) uposuf Iyospiy | %g‘9 T'g A et) 261 97 pıeAvT sısusipa sısuangny swuogdy g
(uIoyayoN Sunjwwueg ‘1er a
“z167 "sam “wag "uvD !TGE'S ‘OT6T
[2g7 'S uogo 331 °'S ‘6681 NUOMMHAN :OPT 'S ‘TE6T
J99e Ss (orpL BY "ıqwop) SISUZOUDS NNVNYHNNLT, :S6E ES "6181 NYOMYHAN)
Studer 910119 :HL8] NUOMUHAN 10q| 3 99g°0—Fr‘0 = TE 0'375 X I°GE—9°0€
upsuj voueg | %9'G ss 2110 | 6r0 9'237 0'88 (ofrag) posnfium sıuogdy F
sy 19) p 3 q V
607
Sturnidae
Passeriformes
(#-2/> :1oyeg)
(aego0IN T/T :P3naıy)
(1867 "org “ONATH
-YaL 'L ydeu T °zIC Ss ‘es6l umuvg)
..,. 3880 = 018-167 X 063 —8‘E7
IegO9IN AR) 'n uDuTWepUV mac LS 207°0 gg‘o 16T 9'9z (dung) wapky sısuafhnund swuogdy TE
(1AO999MUOYIS “MONSALT, "A
“urpIogg "sup uosungwweg !6FL 'S
‘4967 ANIMUTHOOH 9 SUTATUILTIEH
"19% 8 6561 AUTMUT90oH :ur As
[sru40R) = -LAY Ha SNVMOON ‘TIGE 'S ‘gg6T Nuuvg
‘('Jsıof]) Vagfijpyd xv400904dupg =] SAW "LIU "LvVQ !NYOMUHAN !UaTIamW)
@ARL ‘uposuriequyoeN 'n UOYI[LE ‘o9uLog 3 98°0— 830 = I'TE-E'LIX 98T —0'83
-M ‘egyewung sig 9 wmesseuo] UA | %7‘9 67 eoTo | 080 | 061 9'077 (PPIJSIOH) pynbnuys sısuafinund swuogdy ET
(S9IOLA UOA LO) (AUAMAYAHOOH 9 SYTNAUaATTIaH Yoeu)
uposuJ- MS ‘sogop) 3 930-970 = E'ST-L'LIX 87 —-9°E3
uoA O8 'n S ujosuf ‘uposuf epung ouropy7 | %01'9 17 8600 | 970 647 377 (dg) voumu wow swuogdy
(ope ueje 'n eureg (1861 "IPTIq ‘ONAIHATL yaeu)
uejew ‘uposup oje g/0 8 :1osnoıy) 3 19°0—-18°0 = 603 8'61 X 8°65 887
(usuowogeg) egrejeW %19 6°9 IT7°0 980 T'0g 9‘13 AB onpoppu sypunıb sıuody 7
(0867 "IPLLQ “ONATHAL)
(„noayoıp sıpum4b "7 198804) 3 68°088°0 = 905-108 X 313-197
(usuowmoges) jegogsum) urg | %g‘9 8‘q eIr’o | 980 602 193 (ureagstı]) noyorp swuogdy %
(ZL6T ‘6 'S ‘6
(uessın I9q BArP Suoyug UOA A917) any "uIg “Mag "ng “HLINS-SSITAVg)
(uouowojeg) peaf 'n ufosuf uessiN — Fade) _ — 0°61 087 (Aesureryg) sısuappa/ sısuapna/ swuoJdy
(9999 MUuoyaS ‘uıoy
-IYoN ‘FE6T ‘ER 'S ‘77 "Rq’uow "WO
“UTLLAMNOHOS 66T “EE'S ‘L, "WO
u9uowoTeg gsrou “(addnan ‘F 'umof ‘UdAaN ‘san "Lug LVO)
-odturn dogne) jodıyoay Yorewusıg uposuf 3880-130 = 9'IE—-3'8T X 008 0'873
navy yrur uppsuneqgypen N BEUNENY N %9°G 1'S 00T'O Geo T'0z T’ız (Area) SAPLO.LOJUDI sauoJdy 0%
('IF6GE 'S ‘ZE6T VNIHSVNVA)
' TS 88 = = 0'377 LTE 0°8E3—-0°75 X 082-078 E
sq 0) p 8 q V
608 29. Ordnung
Tafel 11
Eier von Angehörigen der Familien Stare, Pirole und Drongos
(Namen nach R. KREUGER, Maße nach und Aufnahmen von J. TERHIVUO aus dem Museum Oologicum
der Universität Helsinki, briefl. 1981; Maßstab etwa 1:1.)
Fig. 1. Aplonis dichroa (5.594). San Cristobal (Salomonen). 26,1 x 20,1 = 0,334 g. (2. Ei dieses
Geleges: 27,2 x 20,5 = 0,386 g.) Collectio R. Kreuger 12456.
Fig. 2. Aplonis panayensis tytleri (S. 595). Nicobaren. 27,6 x 19,9 = 0,329 g. Collectio R. Kreuger
8356.
Fig. 3. Onychognathus m. morio (S. 595). Moon River (Natal). 33,1 x 22,4 = 0,413 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 31,9 x 22,1 = 0,405; 32,6 x 22,1 = 0,398 g.) Collectio R. Kreuger 7852.
Fig. 4. Spreo h. hildebrandti (S. 598)? Athi Plains (Kenia). 25,2 x 17,2 = 0,223 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 25,1 x 17,6 = 0,204 g; 25,5 x 17,5 = 0,200 g.) Collectio R. Kreuger 8394.
Fig. 5. Saroglossa spiloptera (S. 599). Garhwal (Indien). 26,5 x 18,2 = 0,274 g. (Weitere Eier dieses
Geleges: 23,7 x 18,4 = 0,255 8; 26,3 x 18,8 = 0,283 g; 26,7 x 18,7 = 0,294 g.) Collectio R. Kreuger
10797.
Fig. 6. Sturnus roseus (S. 600). Wolga, S-Sowjetunion. 27,0 x 20,4 = 0,395 g. (Weitere Eier dieses
Geleges: 26,9 x 20,1 = 0,375 g; 27,5 x 20,4 = 0,406 g; 27,7 x 20,7 = 0.423 g; 27,9 x 21,5 = 0,4778.)
{Fleckchen sind ein technischer Fehler. J. Terhivuo, briefl.) Collectio R. Kreuger 14263.
Fig. 7. Sturnus vulgaris tauricus (S. 600)? Musaigib (= Massejib a. Euphrat, Mesopotanien, S von
Bagdad). Liverey coll. 1919. 27,4 x 20,9 = 0,427 g. (Weitere Eier dieses Geleges: 28,0 x 20,2 = 0,360 8;
28,4 x 20,6 = 0,396 g;. 28,7 x 20,9 = 0,430 g.) Collectio R. Kreuger (ursprünglich „oppenheimi
Neum.‘, jetzt syn. tauricus, neuer Brutort von tauricus oder besser von purpurascons?) 2564.
Fig. 8. Acridotheres fuscus javanicus (S. 602). W-Java. 29,0 x 21,1 = 0,416 g. (2. Ei dieses Geleges:
29,5 x 20,5 = 0,461 g.) Collectio R. Kreuger 14099. s
Fig. 9. Acridotheres albocinctus (S. 602). Schan Staaten (Burma). 27,0 x 20,8 = 0,444 g. (2. Ei dieses
Geleges: 27,9 x 20,7 = 0,441 g.) Collectio R. Kreuger 7749.
Fig. 10. Buphagus erythrorhynchus caffer (S. 604). Konza (Kenia). 24,1 x 17,7 = 0,216 g. (2. Ei dieses
Geleges: 24,3 x 17,2 = 0,215 g.) Collectio R. Kreuger 8392.
Fig. 11. Oriolus o. oriolus (S. 624). Rumänien. 31,0 x 21,4 = 0,395 g. (Weitere Eier dieses Geleges:
31,0 x 21,7 = 0,431 g; 31,2 x 22,1 = 0,409 g; 31,5 x 22,1 = 0,410 g.) Collectio R. Kreuger 2576.
Fig. 12. Oriolus x. xanthornus (S. 625). Mekong (Thailand). 30,7 x 20,3 = 0,367 g. (2. Ei dieses
Geleges: 33,3 x 20,6 — 0,400 g.) Collectio R. Kreuger (,,0. x. zanthonotus‘‘) 13325.
Fig. 13. Sphecotheres vieilloti salvadorii (S. 626). Cairns (Queensland). 34,6 x 22,2 = 0,497 g. (2. Ei
dieses Geleges: 35,0 x 22,3 — 0,469 g.) Collectio R. Kreuger 12926.
Fig. 14. Dierurus I. ludwigii (S. 634). Natal. 21,0 x 16,4 = 0,168 g. (2. Ei dieses Geleges: 20,6 x 16,7
— 0,164 g.) Collectio R. Kreuger 15005.
Fig. 15. Dierurus aeneus braunianus (S. 636). Hori (Formosa). 27,3 x 18,9 = 0,256 g. (Weitere
Eier dieses Geleges: 26,4 x 18,5 = 0,252 g; 27,8 x 18,9 = 0,256 g.) Collectio R. Kreuger 8329.
Fig. 16. Dicrurus paradiseus grandis (S. 638). Assam. 29,2 x 19,2 = 0,297 g. (2. Ei dieses Geleges:
29,3 x 19,8 = 0,307 g.) Collectio R. Kreuger 14021. ;
Fig. 17. Wie 16. Assam. 29,8 x 20,8 = 0,332 g. (Weitere Eier dieses Geleges: 30,1 x 20,8 = 0,3129;
30,3 x 20,8 = 0,352 g.) Collectio R. Kreuger 12975.
Der
\
609
Sturnidae
Passeriformes
onbıqwvson-N SIg eıewog "n uepng-S
uoy 'OgeN Juyo :(xneauo) poddanu
[(g—)g/2 :syrogoyg]
(snıphup =)
puejdey stq puejessein-g 'n uorsopoyyg-S | %08°C
(—g/2 :s2ıagoy)
[CT Daffoo marypoyuuhr =)
puejdey-N wuensyog eNtgy-MS | %T'E
eIuay-M SueZ-OQ ‘epursn ‘uepng-s
(g/T sne unıswey uoA IM)
7°6
68
80T'0
LOT’O
Lr°0
08°0
L'S@
188
(usgeLiyosog Age Juyo LNYYH 9 auvad 10g)
-I9E 'SNJA “MONSOLT "A “UIOHIUON ‘86T 'S
‘0L6F SAnvp ‘E7E'S ‘66T LNHONIA
“SA "Lug "LVO ‘08E'S ‘G68T TEHOSAY)
3 890-070 =
303-808 X 0'LE—-8°63 (8°T7)
("T) omow orıou snymuboyshug £L
(uIoyıyoN :86L 'S ‘0L6T SIHYL
:00F'8 °1C6T STUTEoY ‘sam 'LIag "LVO)
3.09°0 = L'E3 335 X 3°9E-9°7€
(urpneq)
dno4nognu dno.ınognu snyouboyphug L
(odıeyg) sısuauob]a Auayjoan snymuboyphug —
(99 'S ‘1261 SIT ‘SaLvq yoeu)
'ejo3uy-N "n epuesn sıq 9UO9T BLIOIS — 63 nl — — 0°91 a rd un oyıedeuog saugnbn] 2.4911090 7 I
(GE6T 'IIO9 yauaıq !eureg g/T :19°n9ıy) (T86T "JPLIq “ONATHAL "L ydeu)
(usuowogeg) 3 08°0-13°0 = 6'81 -F'8T X T'L3-8'°7
?Aopuog ‘europepeng ‘oyaumönog | %8'G | 87 | 9600 | 870 L'8I 797 (stueq]) Djpdvsrauunag swuogdy
(uioyayaN Junjwureg)
(2n40901dumT =) 3 128°0 = 061 xT HE °3 120 = L'SIXLFG
(oAynqueg dogne) uppsup syenpenwpy | %09 | gr | 0070 | 220 | s’ist | <'rz ("peageg) sdanaındınd worppau swuogdy &
[19999 AUuoy9S ‘NoNs9ı]L, "A "UIOYNIUoN
:urpIOg "SON UT “PET 'S 'EE6T STAA
96 8 ‘668T MONAHDIAY : (ww 77
(uoruuegrig NoN UOA Io) stq Tg doqe 1) 90# 'S ‘6187 NNONAHEN]
u9uowoeg ‘(ujosuf syey 3 180-830 = 0038-081 X 908 -FFz
-eınwpy) oAmgweg jediyoay yorwsıg | %E9 | TE | LoTO | @Eo | 067 | 89 (KeaH) npııu worgmgow suogdy x + Fe
(puerigong, (189 ’S ‘zI6T "SAW "La LVO)
"n uopeismor ‘uorergsny UOA AO) ‘cL#'S ‘T0O6T TIadamvj) :74 'S '868T
(sSWU10DJ = !X040904NWDT —) SIT ‘ALAOS TT 061 'S ‘688T HLAON)
uore1gsny-ON “UJosureqyaeN 991A 118 8‘8T X g0E- 1°C
"n e9umanoN “Ufosuf nıy “UoNyYnjoW — 6° _ — 6617 F'87 (L) Poympw vonppw swuogdy x + TI
(NYOMYHAN “Sam 'uIug "LVO ‘Fr Ss
(uoznf uoA ao) ‘S68T SIQT ‘AVEHALIHM 9 LINVA9-'90)
(snow) = 2040904dumT —) 3 780-630 = 708-061 X FL 97%
uourddrmyg sogapg-pegusz n-n | %s9 | es | orro | eeo | 26T 1'97 (todoag) sısuafinund sısuafinund swuogdy O7
4 ) pP 2 d W
39 Oologie, 37. Lieferung
(„ettipegso y““ snw aoıgy)
29. Ordnung
(109991
-UOyIS UloyayoNn "SAN "Lug LVO)
3 870-870 = 0°89—8°81 X 9'08—- 8°77
Aowoyea sıq edouag | %9'E 6° 2070 gg‘o 8'‘0z z’Lz | (aoımm) snaundıund snaundınd swusogoadumT L
(un ‘81x 9'97
:66€ 8 ‘LG6T Sıuaaoy Tg Aol 77)
(FOL 'S ‘FI6T TanHj)
[(uosuremg) 4opspbounpu —] 86T EST X LIT — 1'93
aegısurg Spurjdeyp-o SIq uuRwwpaoN
oysnyy op Surjyuo eruoy] "IN SPP ON UOA —_ 6° — _ 0'617 6'023 SNIENALIOI SNIENALOI STULOJOLdUWT 8
(eaez sne IH)
3unp ("[[09 u9fPO.LIOH ‘NIAVH/) ydeu)
-unp-o3uoyy 'n epurdn SIq uorumssogqy-S — 07 — —_ 0'81 G‘ez (ao) sdomaındınd sıu1ogo.dumT |
(ınsdoapH =)
RIUO N
-N sIq erewog- A 'n u9TuIssoqy-[eiyuoz (uSASLIYOSOA 910119 [Jyom pun HKJew Puyo) (adıeyg) 3210pnapms snyuboyohun —
; (9L6T TOOBOMOHL X NMOug)
(adLT, UoA F/0) 077 0°08 X 0°8E-0°08
uorumssoqy-y2oH — OL _ —_ L'03 TE (jpddny) s2.4s042970 snymuboyhug F
(0867 "[PLIQ ‘TTTANONANOF Ha)
(equpgj g/o :ojjauoumog Op) 12 - LIE XE SE -2°SE
puejessein-N sıq eyıluwd UOSRUZIIOUTON
-UB], UOA !eruoyy 'A puejypoH "BARZ-O = 1'8 == —— 61% eb te onsa4ayy sı480.1nu07 snymuboyshun €
(eursejeg Sne dorf) (MONYSOLL, "A 'n UIOYIyoN usdunjwureg)
(nsdorbvfg =) 3 18°0—82°0 = 1°T8—-9‘61 X 9°La—6°9%
meweapepp- M 'n uopy sıq vungsepwag | 908% 9°q 160°0 | 620 0°08 GLG (10Y82[08) Muumagsıu snymuboyphug 9
(FIFT 'S ‘1961
[(s)p/> :uewpon X aoydıy] > NVNAON) 9 YMAHOUY °'SAW ‘LIag "LVO)
810408 093 — 0'737 X G°GE 70€
“ujosuf Tınyy Jo pqYy “eıpewog sıq BoapLag = 9°6 au = L'E g'7E (RARH) upfrg snymuboyohug TI
(u9SSOJyaS9FUurs FydTu uogo
uogsou Op O'ERXFEE :TOP 'S 'LG6I
sıuadoy 10q gp AowoF °(T86T "PLIA)
ONAIHYAL ypru g “royypmuoys “ur
sa 2) p 8 ad V
610
611
Sturnidae
Passeriformes
(pue]
-BSSCIN “OWOAY g/D :o[AUoUIMo—F op)
onbiqwwdon-N “ussopoyyy-g 'n
(T867 'IJPLLq ‘ATIIANONANOF Aa yoeu)
UUBWOSIAIS
-N OURZ-OS SIq BIUSN-OS 'n eytlueäugs, — 1’S — - 361 0'97 ymgnsıya sn4aJdo4oyo sau1ogoldunmT &
(1867 "Ypraq ‘ONATHAZL, "Lf ypeu
II 8 :778°8 ‘6967 SIT “LNHONIA)
(reeAsueıL-O 8/T :1P3nery) 3 680 88‘0 = 003 £'81 X L'08—-9'97
jeeAsueı] ‘uorsspoyy-S “uaIsepoysgy-N (uuewnoNn X 'Ier)
-MN "eurmsgog “eNLy-MS-N “eoduv-S | %9°9 9°7 970 | 680 | 86T 118g vuumupıou Snongkiwy9 swu4ojoL.dumT 97
(uıoyayoN ‘0567 ‘OT 'S'FON
‘F 997 [OO ‘UEHOTAT !C68T TEHOSAY)
onbıgqwed 3 80-1230 = 0°I1E— EST X 0'8E—8'7Z
-OAI-N ‘puejessein ‘uoIsopoygy-N SIq (gqnepaef)
eruaxg SOgsyoIpns 'n JOIgassgnfT-eIadeyg %r'9 6°C eIT‘o [toi] S‘61 787 snigoahs snongkimyd Swu40014dumT OT
(e-z/ (19449 MUuoy9g ‘uuog "sn !60FT 'S
:0851 'S 'SE6T AHLVIOS 9 NOSMOYL) ‘T96T NYMAOH 9 YUEHOUY ‘UHONVIYM 'A)
aıez-O U JeL TzIzug 3 19°0—98°0 = 0'08—- L'8T X 0°TE—0°1%
‘epuesN) “erusyp “erpewog “uarumssogVy %89 6 0210 680 8'617 G'8% ugÄlg sıquaarunho snonghjnyo sıu1ogoldumT 9%
(uIoyayaN Sunjuurg)
UUEWPION
BLIODIN SIq Jegousg | %T'9 IF £60°0 [eralı) 011 01% sn.mony9 snamojny9 swuiogoAdwarT T
(661 'S- ‘OL6T SENVL)
103 — 9'083 X 087 —0°13
(pueideyy woA 01) (fepıjjog X Aaoury)
jeyeN UoA IIPH-UsusaM Sg puedeyp-O — 09 er — 10% c‘1z Jomunumea suoyıu STUL0JoATUDT %
(#—g/2 :sy1ogoy) [66T 'S
[(purppryg) sumpmoodsıq "Tyasuro] “OL6T SEMYL :(osseyy 980Ip 4sIour) 168 "8
[ej03uy-S ‘1S67] SLUTIOYN °S0E'S ‘0OF6T YAnnvHa
sıq unged) UOA yoyraaqıoa *(T) suoyu -IHIN 9 HOSAOH "FE6T ‘01 'S ‘Zr "og
u NZ UOIOU9S Rejoduy-N UoA osıuro] "uo "uIQ ‘HOSTOH “sam "Lug 'LwvQ]
(uousoy Aogne) jeyen 'n JerAsurız, 3 090-980 = 778-781 X TEE 697
“UOLRSPOYNT-g BUrAsIog BILHY-MS | %E9 19 170 | 680 20% 9,87 "SMS sN.101domuaoyd suau stu4ogodumT X+9L
(epuesn uoA A9If) (E8Z7 'S 'SE6T AHLVIOS 9 NOSAOYL)
ermoy-M N (uno)
UEPNS-JeIJU9Z SIq BLOSIN-Teguaz n -N — s‘c — — 007 1 snunshygoum snaindınd stu10g0.dupT 7
Sy 19) pP 3 | d | V
332
((#-NE-7/ :sowep]
(purpssvin 7/D Sojjlauou
-INogT Op !uUOIsopoyy-S 7/D z :avdnaay)
eyeNn person p-olunig
YLIV-AS Sg S Boy 'n ungun-
(uUVJOPAoy) urpng-[uayuoz sıq [udouog
(uno snuordosiiyduod —)
BUN]
wpuwdn eyılwdun]- MN Z-O
sIq Sg (uprumssogqy-O) UEPLIG 'n unpng-g
29. Ordnung
purjussurn-g SIq UBISEpoyy>-S 'n
BUBASIO ADAM BNLIIY- MS "N Bjoduy-s
(nsdoopy) = ppınp =)
purjisuag
"m [BBASURLT, SIG BYLIIV- AS N Boduy-g
(u9ISOpPoyy-N "WBUnpummm UOA A0ıS])
(aut
-uBdun]L-s) Paz-s sıq BIOBUY-[uıyuoz
(oggeyusg z/I :188noay)
[(aoısp) suowaoon»jd yaısjoryosun |
odıourıg
psuj “uoduy-N 'n vBpundn] sıq Kowoywe
612
%8'9 6% 8600 | E20 rLl
%r'9 110 LEO 1'0G
%9'9 ra\) gro IP'0 L'08
N) =
%1'9 6'L a) sro 6°17
(uOgOLIYDROq Open OUyo SLIM 104)
%r9 Ay rI1°o Ir'0
1'22
60
ay ») pP h el
0'87
GLS
’ 9%
DER:
Ele
08
(1861 "1JPLIQ "WTTIANON
UNog Ma yoru Zn ONAIHAMLL yowu
Hm F 005 'S 0267 SUWVP ‘067 Sıuaa
-OY 66] LNUHONIA 886] NVnaoy N
MUHOUV '0E6] AAHOTagL 'PI6T aan)
8 980-830 = ZEIT —Y'91 X L'98— 6'373
(vAWoogg)
TUnDa4on doyspBoona] snppumııhun,)
(uıoy
-IUON 6] Taus 9068] amosaysı)
3 68°0 880 = 9'08—- 1'61 X 9'87—9'97
(On) snwpnn»o seusogosdum
(OPPMUOYTOS Ypyosuoduny
ON) ENV zZ SWIONIYON :G68] TAHOSAN)
3 F7'0— 880 = 808 E08 X P'8T—0'97
oddny
n.odomdınd snaodomdıund sauogosdumn]
(PP6IJ NOsnug] yowu ‘096T Op]
‘os an) "WIO "ag [ner ‘umoougg)
008 7881 X 008 0'7%8
(Sıoqjyua) msaaau sono SıuogosdumT
(OP6I NUNWVELSEIN N HOSAOH we 'n)
0 = THE TIEX ETE-9'6T
(yyuug) sopmasnn sausogoadumr]
(uuwwmoN))
Isuopunng snprpuojds seuuogo«dumr]
(1861 "JPLIQ "ONATHNATL, yovu Z !P8ZT 'S
SE6T AELVIOS 9 NOSMDYP !Ez9 'S
"0E6T SELVEL :LE'S '6067 SQL 'SLLVEL)
39P°0-FE'0 = 975-908 X 9°TE—L'9Z
(A) snpipuojds snprpuards swuuogosdum
gs
Il
0l
Gl
613
Sturnidae
Passeriformes
ZUALN-UrpNg
anz enge 'n undweyy-N SIq Jedouag
(7/2 :uewpog X doypıy)
(eIfewog ‘puejeumd WOA IOI)
eytluegurs, sıq eıewog 'n uepng-OS
(9—s/ :uewpon X doydıy)
uorumssogqy-g 'n eIfewog-feayuoz
(9—g/2 :sowepf)
SunupjoH usynd
ap deyyp SIq jeeAsueag 'n BURASIOS
(9—g/» :aodurjı 'A)
eyılurdurg-N stq (BIewog) ni egnf
eyıluesug],
-feayuaz sIq purjessein-N “uarsopoyuy-N
BLUM
“puesn-ON ‘eIewog 'n uarumssoqy-gS
%79
A)
LI
&9
860°0
80F'O
r210
al)
cor‘o
L2°0
08°0
cr‘
rr°0
13°0
rs7
gs]
F07
ETg
61%
I'cz
(uagaLLIYDSOg age Juyo LNVAI PR auvug 199)
Lg
{7
rg
8TT‘O
980
g‘67
(u1oyayaN “uuog "sn
“MONSOLL "A :ILAHS !TZE "I ‘0867 STLvg
‘7761 ‘9 °S ‘TE 'T00Z "AON “LNHLAYH)
3 68.0770 = 061 8'91 X 995 —8'77
(aan) dayapnd sayapnd oa4dsı XP
(037 'S ‘T967 NYmaoH X YaHoauy ‘ganz
-yNUBıT Sn ur dodurjıg "A Sunjwureg)
0'671 —0'87 X 098 —0°7%
(pddny) snquadns oaıds! 97
[(T09 aoyaay sne org 9 :uuogg
"snmW) SIPT 'S ‘TI6T NVYNAoH 9 YAHOaYy
:(6F6T ‘0F 'S ‘eg DOy TOO) YEHOTag]
3 18°0-07°0 = 618-061 X 008 —-0'13
ygAıgr snpdmangpo oaıudsı TE
(003 'S ‘0167 SAHYf
:T0F 'S ‘LS6T STuaaoy :LORTL'S “TI6T
NVNAO 9 UIHDUV :FZE 'S 6767 LNTO
-NIA °'SO "LIUg "LVO ‘C68T TEIHOSAy)
3090-480 =
677 9°08 (8'ST) X 0'FE 693
(up) 4070929 0a1ds! OFT
(a0duejIg "A Sunjuueg)
3 180-870 = 061-097 X 087 — 017
(Mousypray) 14ayas“L OERTURS] FI
uuwwpoLLg PIsnbun sıpp.ımymb nyy9W0aN —
(LOFT 'S T96T
NYNAO) 9 UIHOUV !6F6T ‘HE 'S "EZ 09U
[00 ‘UMHDTag ‘U9y9s95 uuewunaN 'O
199 [09 doyoay 7, !yanpyueag “wnosnpyy
-SI9QUHNIUIS WI 'J[00 YETONVIYT "A EI)
3 880-080 = 208-861 X L’83—-0'83
"MUYOM 40J091qg 4ogspdyynaads' 6%
sy
19)
2 (stusouungg =)
(9P 'S ‘9767 vanıvg Sur "jo Me)
|
| |
uo]A) — ade) - -- 1'07 9'9% ("dgg) wauas snumg &
(109991
-UOYOg “Urjaogg "Sn TOLIUOH “UIONAyoN
:COE'S ‘OP6T YANNVHLAIN 9 HOSAOH
(9— eg) "saw "Lug "LVO °‘G68T TUHOSAy)
[(wn) nyomounan = !snydong =] (F761
v[oduy sıq SYIwags0m S wı'n pur] NIdVH) Toq 0EZ) 037 E8T X T'ZE-6°7Z
.dey SIG BIILWOS "N UBPNS-S "UOIqLIYV- MS %r'g gg 2710 er0 LO 8'87 (uoyosnom) Pau nıoydomas) gu
(0867 "Prag
‘ONAIHUAL 'Ff ypru p ‘gg6T aauvg)
(»ssojbo4ns 7 :NNONUHAN 194) 3 13°0—61°0 = L'61—-3'91 X 4'85—L‘E3
wessy sıq quyospurg | YL's | Fr | 9600 | 97 1'81 #97 (s1odı) nuogdopds nssojbomg' 98
(urjıogg 'SHNW “MONSOLL "A "UIOYNIYUON
&n Lurup) “Sam Lian "LVO '808'S ‘LL8] TAVLLUVH)
= sısunımosnbnpmu = !SNINDIDH — |] 3 830-810 = 8'LI- SIT X 0°L3—- 1'733
E aeysudepen | Ks | sie | 7800 | 080 | err | 077 (aoInN) DIDınn Dssorbomg: 8
> (1867 "PPrAq
° ‘ONAIHAML 'L "N ATTANONANOF Ha yaru
A & OL :TIFT'S °I96T NVMaoH X YaHOuYy
:696T ‘OF 'S ‘Es PO "IO "UHOTag
‘yganpyurıg saw ur Jo» aodurpım "A)
(9—F/») 061 —-Z'LIX 8°87—0'47
URL, SIq S PIBWOg-g 'n uorumssogqy-g _ ır _ _ ‘SI 897 "nyoy snıbau snabau sn.ıwsdowsoy 61
(1867 'PLIq ‘ONATHMEL "L yoreu)
(9— 8/2 :qurıg X poraq !g/T aodnoıy) 3 330-080 = LI 7‘LI X 4'037 1'97
eytluedur nn eruoy-S | %g'C 0 180'0 120 FLT E87 (sturgu)) Ypunıgappıy Mpunagappıy ads &
L(9—-)g—F/0 :uwwpon x aoyaıy] (EFF 'S 'TH6T NVMAaoH % YEHOUY)
vrUOy-O SIq rıpBwog 0'871 X 018-978
-[eayu9z-S 'n uelumssagy-S “urpng-OS — er = - 0'81 8'0z odaryg rfoypays ypunagapyıy oaadst OL
(u1oyayon Sunjwuwrg)
(Boaguagg snw do) 3 870-130 = 98T 081 X H°95—L'SZ
voragg sıq eyrapy-penrogenby-N | %6‘ 97 | 26000 | 220 | est | 09 (moddnyg) sa4waar/nı doyamd oaıdy $
s4 9 P 3 a V
614
615
Sturnidae
-
.
Passeriformes
‘329 yıuyaswpang wı (0867 ‘TEZT 'S ‘GL ‘908 "ISIEL 'YeN Kequwog "UMOL) AAYOINVA Yoru yasLıF U990A (KOT 09 EMI) 8599 6T (r
[pruunys = !("ppog) snaopjora =]
opuoH-N 'N opregY0H ‘uneyarg-s
[us3ojo9 67 10q (F—g) F‘g/0 :1oyprueg]
eulyg-g 'n -Jeayuaz
I(g—g)#/o]
(snyanuawaL, =)
uoJ4a9 ‘fedoen ‘usıpuf “uegstueysfy-O
(F/ :10yeg)
(mung =)
JeGO9IN de)
(#9 :aaavg)
(pwuungs =
‘ wsdorpods' :NAOMYHEN 199)
usuewepuvy
(98/2)
(mung =)
TUINDOPUT 'n puejreyf, ‘wreos
-SEuaL SIq S ueuuna-MN 'n ewang-N
(9— 8/0 :Kodıy 9 Iy)
(pwuunis =)
wessy-[eiguaz n -N !snonumssn
uojeguag pun (uressy)
93.198] TuysIpy SIg Q U9IPUT-N snor.imgnppuu
(g/? :uavg)
(muungs' =)
SYIBMPNS Aeqwog] UOA UAIPUT-MS
‘9
a)
67
r07 0
607°0
6070
180.
(4X9L Oy2IS)
cI70
0070
120
120
g'77
(a999MuoyaS
“uIoyayoN ‘suaayag “Sam "Lug "LYO)
3 880-880 = E'6T O0 LIX 313-778
(199810, 7) sasuaddıpıyd snumsg ZI
(783 'S ‘96T PyPno,L %J)
uoUuLd) SNam1as SmuAmIs —
(a9491uoYaSI
“uaog 'Snp udoyayoN 108 'S ‘OL6T
YVdOOHHOLHY 9 AH ‘LP 'S ‘9561 Taıvg)
3 180-880 = 803 —-9'91 X 365 9°07
(usw) wnımpobnd snuungs' GLI
(038 'S ‘8867 TTUvg)
L’6T 0/81 X E78 0°%7
(yyÄlg) snıbhido.ygkua snıbhdouyghiua snumgs 8
(639 'S ‘gg67 yauvg ‘SAN 'LIug 'LVO)
3 080-830 = 808 -6‘L1X 887-077
(104AL)
sısuaupumpun snıbkdomyhuıs snums Gr
(wioguyon !8L8T ‘6R 'S
‘,, saoygeag ea ‘STLYVOQ y9eu 19IT F)
3.08°0—-08°0 = 08T —L'ST X 997 —- 3'07
(UOPAOF) PJonoWuau snarimgnpw snuinas 97
(19992 AuoyaS “urIog,
Snp ‘MONSOLT ‘A ‘su9ayag “UIONIUON
i8Ig 'S ‘gE6T TTUvg “Sam 'uag "LVD)
3 080-380 = 1617-091 X 3'985 — 0'083
(z[9031]) snorumss» pun
("wH) snouumgnpu snoLLDgpwu snumsg 08
(uIoyıyaN
679 'S ‘ge6I TTuvg ‘’sam 'LIag 'LVQ)
3 830-F2°0 = E'ST-0°LIX LIT 8'37
(uopIOf) vryyljg snouDgnypw snumgs 0%
29. Ordnung
616
s Di
ı (Beagypen yona 's) 8 [7°1—-0L'9 A "I HOSLYNVIW N NTAHHNSA RB N STETLALOHN "NILLLOTHOS Yoru UODHIM dor AOUHBOMAF YasLıF UOLIOg (7
9799 nz Deayyauı 's Junaodanquısg
[usaozy („—g)g/> :uwunwuurg —
"wpuogea purjdugf 'n ZIeOmyg ‘purjjoH
sne uojyez "Tuye ‘Bızdıo 1oq (8 ewuro
9-7) £p/0 :°"qq uonagyeds (6-8)
9‘ :g uognaqunag :2E’S ‘0961
YHAIANHOS] uorswuropyy sıq wdoansp-OS
ysanp “ea 'n (um) N 8b uno
sig SYBMgsopns wdonngg-N ‘(osseyf
ODLIOA A9QR 'S) uJOSUT OydsıyLag *syDroa
(IXOL, PypPıS)
(OP MUgyOS !OTE 'S 'L961
NHAHHYUA :6CC£'S ‘9L6T HOSLYNVW
sn®e “HOSLVYMVW "Nn SAINYSOY :096] aa
-IINHOS !ETL 'S 'PC6T MALLNANAC !SE6T
en STAIAHNOUN) IST 'S 986 STıa
-IHOUN :68°8 "LE6] MINWVHLAIN ID
-STHOS SMELLLOTHOS !ZI6] INSMOMAINOCT
saw Lug LVO) °NIvaunop ‘Aay)
3 990-480 = 477 —0'08 X SE 9'97
que [OL 1049948 °n uorwyp-N "usrozy | %F9 | (10‘2 0310 rr'o IE L'62 rg sıumbyna sımbma snumgs 6667
("JJPLAq ONAIHNAL 9 !NIvaunop yaru)
(spuepgoug 9/9 :a9dnoıy) 3 H7°0— 880 = 995-708 X LIE 1'873
uSpLIgEH 9dagny 'n uposug purgoys | %8'9 $‘L IT‘ ro 6°17 0°TE ey snorpunmpaz sıwmbpna snumgs #9
(WLIUOFT “UNLIOgg "Sn "UIoyayoN
‘MONSOLL "A ‘SUOAUOT "Saw LINE] LVO)
3 990-970 = 987-805 XEFE-1'87
EGTORLIM I %9'9 08 TETO €g°0 0'277 G IE uopfro,g sısuaoanf sıumbna snungg 08
| 199PMUuoyag ‘um
- 198] SM MONSOLT, "A UIOYAYON !8GE 'S
[(6—&)9—g/? :yosyeyen] "9L6T HOSLYMVI 908 'S 0L6T IVdODIH9
(OD =) "LH 9 SAH :LEIL 'S 'PC6T MALLNANAC
ungstuugsfy-N uRı] "(GE6T EST-IGT'S °I9—8E vımby)
“urgsoyany, ddogsuosıdary SIq UOLLAS MNAHOS ‘CO6T AUM ‘9061 NIvaunaof]
'n uouvqr ‘uorseurpy edoin-OS 3. 99°0— F£‘0 = L’TE-G'81 X 0°E8—-0'77
sodtiqn ‘uaeduf) "uoreyf ostamswyrusne | %g‘9 99 1210 gro 6°02 L'8z (snowuurT) Sn9s04 SnUmIS 908
(08T 'S ‘FI6T ‘TC "PA MALENSWEC)
L(2)9—g/» :moryuouoc]] _ s‘E = ul L'EZ 008-891 X 093-861 LT'
(WLAUOFH "qq “urLiogg "Sn
"SspG '"S "T68T TDISMONVZOVL "UIONIUON
(mung = “unsdornibp :NUOMUHAN 199) “SAW Lıagg "LVQ) !6F 'S 'E06T LUALUVH)
Sungueyag 'n 3 980-820 = 008 — 89T X 098 —-0'E3
Nnsuryy SIq purjtnss() 'n ‘usıeymegsurasg, | %6'%9 sr I1T°0 620 611 8‘r7 (sejpeg) smunuungs snumgst LI
a4 9 p 3 a V
617
Passeriformes: Sturnidae
L(g)p/o :aoyeg]
(6181
‘FIE'S ‘8 Ssaoygeog Aa ‘Io ypeu)
803-611 X 668 0'93
uegsıyeg UI puIs — 9°C — —_ T'0z 193 gwnp “our sımbna snumgs ZT
(1—-F/2 :aoqeg) (UIONayoN :9°08
(yrÄIg snarpur — 910.119) any g‘GE 9019 :919'S ‘gE6T AEUvg)
(edan-M N) 3 090-880 = 918 0'671 X 908 9'9
feAyaed) sIqg Ammyoseyyp uoA vlepewe gg 9 2210 cH0 10% 6'82. syooag wuny sunbma smumss' 00T
\ (uruog "sup “uroyayoN
‘031 'S FC6I MHLLNANAAq "San "mug
"ıv) 'EE'S ‘9867 YUUvg 9061 -F06I
usq99T “OEL SSL NOF'S FI 'I0O 'Z “Buzanvg)
wre] 'n Toıedunyssq-S ‘ueyyosueL], 3080-180 = 083-961 X 978 — 0'87
sig uwegqg 'n elıep AAS U0A URISONyanT, %r9 0‘ 1370 cH0 1‘Iz 8'6% adıeyg snjouo4fiydaod sımbjna snumgg 19
(Moys9LL "A 'n UIOYayoN Uadunjwuweg)
T9J0AUOM-M 3 02'070 = 133-808 XF TE 9'68
“aospeyteg SIQ jean) UOA UOLIAIS-TOINM ) Bi za) LF°0 &T7 08 yosurg vfysmangod sıumbpna snuung' &
(1999 MUHS :ZZT 'S
*FC6HT MALLNANTA CE 'S ‘961 dauvg)
(uraf sne dor) 3670 = 818-108 X 0° TE —-1'97
uegstueysfy ‘ueıf-ON “uardseysuea], EL 6°9 9870 670 Ele 867 own .orgou sıumbjna snumas' LI
(d999MUoy9S “SU9IYOAT "MONSALL "A
(snseyneyy WOA A917) ‘“uıoyıayon “saw "uag "vg ‘Auy)
(„ye1f-o 'n) uray-g sıq S 3 09°0—980 = 937 0/61 X 208 -8°L7
snseyneyy WoA Q 'n M BYPA-E3JoM WOA OLG Zul 60T‘O 170 G‘I2 867 ZU9Ior] snI1sDInDea sıımbjna snumgg' 9g
(wnI9ZIA U0oA 'L, "zZ Idol)
(aea]
-N sıq S) usmusway 'yınyg 'n uoTuau
-IV ‘uorseynexysueiL-M (swaosp4undınd (0867 "PIIQ ‘ONAIHYHL ypeu F °C7ZT 'S
(qrötesnw F/T :10°n9ıy) ‘FC6I MALLNANAAQ "Sam "uug LVO)
uorfoyeuy-[eijusz 'n -Q “uegny 3 17°0-98°0 = T'ET 808 X 6'838 8'97
sIg S SOON] uUaZzIemys Sop ON UOA "PI9 suaosnındınd n
‘wry ureag)-S ‘USfoT-S-O :5N91.1mDI 7) Tı sIT'o Ir0 9°T% G0E ang snauumny sımbna snumgs 61
sg 13) p 3 q
(#-7/»)
(oyspdou.ungs‘ —)
29. Ordnung
(19449 MUOYOS ‘OYSOEL "MONSOLL "A ‘suoa
-yog] “UIONayoN 09T 'S 'LI6T AULMUAD
-0OH 3 SUANHUaaTIaH '767 8 6F6T
AUAMYAIHOOH SAW "Lag "LVO :TOST
“SZI'S ‘6 "WO 'F "UMOoP ‘NICLSNAUHEL)
3 19°0—08°0 =
0°18—0'87 (9°97) X TE 0'°7
regt warf wuyeung | %8'9 9077670. 280 | 207 g'L7 (PIPYSIOH) »]]D! »4yuoo smuumgs' LIT
(988 'S 'EE6T uauvg)
(opspdoungg =) 018-761 X 965 —-8'97
SOPT "PURjI®tyL, "Burıngg-S- — de = _ 203 T‘1z (odawyg) "uamorf Dı7u09 snumgs 0%
L(9—F)g/d :aoqeg] (uIoyayoN
(.ospdouungs‘ =) :9EG 'S ‘EE6T TaUYg ‘'SAW "LIE "LVO)
yUzag-Indıom sıq 3 07°0—08°0 = E13 0'81%X 1'638 €'77
g wwangg (usıpuf sogsyaıyso) anduey | %r'9 PC sIT‘o FEO L'61 9'9% (yyÄIg) saumıpo4adns nıyuoo snumgst LS
(gnag 'z yone
‘9lo ıe !a/o EL !r/o 79) 9L6T "Azq EL6T
sp/ n 6F+/0 : en Sure [(aoyeg) (AO9PAMUOYIS MONSOLL "A “urIogg "SU
nıyap "[ypsuro Kuogspdoumgg =] KUIOYIYUON !ELIT'S '086T "en ONVUYN
wessYy !Ggg 'S ‘gE6T AAUVE !'SAMW "Lug LVO)
sig O ‘prqwaapÄH SIq S uezuraoag 8 69°0—TE0 = T'IS-ESIXSTE-375
-[eiyuoz popuf uoA uarpuf-N 'n edon | %E'9 67 9170 0r0 10% q‘1% "T DAU0OD DAUO9 SnUmIS' OLT
(1999 MUOYOg ‘urf1ogT
"SH "MONSOLL A ‘sUBIYOgT “UIoyayoN
L(8—F)2/2 :oıyuowocz | :L21 'S 'PC6T MALLNEIWAC :887 'S '9G6T
(ınsdorpods =) AH00OJ, VI '9E 'S ‘9767 MaNvg '’SAW
surdep upsur LIU] "LVX) :P9G 'S "T68T INSMONVZOVL)
-gdney ureyorg woroy 'n wuryg 3 280-880 = 0'383 —-8°6T X S'0E-8'CZ
-N $tq purgtanss) 'n uoreytegsuwaL-os | %0'L r'9 SzI0 Ho 9°07 6'87 NOUTUIWOL, SNIIDAUD SnUMIS EG
(LIE "S OL6T HOSLVH
-YW 19999 nUOY9S 'MONSOLL, A “UrLIOg|
"SH UIONayoN "SAW "LINE "LVO !AuM
(9-+/») "7687 'TZE'S ‘OF "UIO 'F 'UINOF DINTONY)
uolsoun], sIq ONNOAL HL "UaltzIs 3 09°0— 080 = 177408 X FE 1'87
“uparupaeg BNISION] N AOKNR) uoLıoq] 29 I) 2210 sr 0 s‘Iz 808 NOULWWOT, Loponun snumıs 98
34 3) P 3 a V
618
= L(0861 "TEST 'S ‘92 008 'IsIH
© "Yun Auqwogg "umopf) UHMDINVT :(Z961
“6118 ‘9 vlSojopumg) MONNHHOSOA
L(9—g)1‘E/0 :aoyprurg | "v8 :708 8 ‘0L6T SUnVP 808 8 ‘0L61
ByTıpepng R UVdoOHHOLST 9 TaH :096T NOosnug
‘purjoosnoN ‘usıjwagsny ur ‘ujosuf uoyos !MONVESAY !IPL 'S ‘FC6T AHLLNEWAC
-dor ne gomgpM g1odımgedur !uÄry ‘139 'S 'EE6T Uaavg ‘'Sa "wıagg "LVO
-BN RUIIOPUT :41OPURMOFUTO 19PO 9.190 ‘(gL8T ‘187 8 ‘gez "UIOQ ‘7 'umopr) Ay]
-ıngosur !upuwwepuy ‘eddN “usıpu] 3090-880 = 377-361 X 0'948 —9'9%
“uBgsoyan]-g “uBgstuwyofVy “urgstyospnjog] %r'9 12 P710 sro eg 8'63 CT) suasaug sıgsaa SO49yIopımy GZT
(ororoA P/T :z/z uam sn) (867 "PL ELLEHOg)
(900 A g— 3/0 :786T AOAaIS) 3 190-990 = 098-061 X FEE 71%
eg | %z FA LETO 280 212 p'o0E UUBWOSONK 7Py9SYyI04 msdoondT 1,
© (1011UOFJ Sunjurung 88Z'S ‘96T HHDNOL,
= [prwungs = !(a0[0e M) srwaofpung = | VT!L2E'8 ‘9767 UANVE !' SA '"LIug LVO)
‘3 ueumsp ‘(„puognag) BsounIog "wuryoopuf 3 780-180 = 06T —-T'LIX PLS-3°78
e) -N uonmng s14 ueuuna-o8 “"wurg-s | %9'9 Ur OTTO 180 gs] 8°03 (umoun)) sasuaus smumgs' Q]
n (u1oNayoN :L967 'P0OH X "TTaH)
N (mardnonıd =) 3 990 = T'IS— 461 X 6'895 —8'87
S warf-Oo | KrL | 89 | szrio | ro | vos | 6'85 (PIOSAOH) doJoo1.4 snusgdoumgpu snums' y
ai (09T 'S 1967 TUMUTHOOH
S x SUANmUaaTIag sam "zug LVO)
& (andnonıH =) 3 880-780 = 008061 X 6°L3—-4'98
2 BArp-M | 89 eg L11°0 980 e'6l 1z | (umpneq) sn4sdouppou snuoJdounppwsnumgg' 6
N (moıdnanıH) =) (8867 uauva) 018 4'61 X 695 0'%7
BUTNDOPUTF-S yoru (LIOPRATRS X 1[O1]STH)
pugwyp-g 'n -M doqn ‘wriosswuoL-g —_ (ehe) _ = 2'0z 097 snwyda9oona] snorupumng SnUumgs F
[(g)e—Fp/ :aoyyeg]] (UIONAYON !EE6T YANVE "SAW "LIug LVO)
(mordnonın =) 3 790-880 = 087-681 X 968 9°€7
WIIOSSTUOL, done wwang | KL 19 IETO 9H0 9°0% 112 (uopAof) snowumuAmg snovumumg snumggs FL
(aayypmuoypg “Banqury 'n umaog "Sn
(g—g/9 :aoyugj) “uroIyoN :065 8 ‘9861 YHDNOL VI
(nordnanı) =) ‘7279 "8 'eg6T Hauvg “Sam "Lug LVO)
((Osurqpe] OyostÄejepy ouyo) 3 810-190 = 093 gTE X FILE 867
Burıngg ‘purpeugg “eurypopup wuryg-S | %1‘9 9'8 a El) 09°0 6° 18 (mA) sopomabıu snumgs ZET
a4 od p 3 d V
[(g—g)p/o] uruuna
(1xo 7, oyars)
(1867 "7PL1q
“ONAIHULL, yowu Z !PEQ 'S 'EE6T aavg)
3 pr‘ = 077 0'08 X 9°67 — 1'97
uoppeM I
MN "wang-[eqguez nn -N uorpuf %0L e9 DEFO rro 605 rLa USJEnY-ULADOR) ER0U009D0 Saiayoplssy Sy
Lea) —g/o :aoyugr]
[yuuwuos |
(aeg) snpposnfu smorunanl yone]
BULgDOPUT *([Psurgq[eH (gES 'TES 'S 'EE6T aauvgl)
dogme) purjwyf ewangp-[eayuoz sıq (92 oyaıs) 0EZ- 061 X 0'ZE-F'7z
1sduwayy 'n uwuung-g “wessy ‘ındrury - 19 - 8'07 &'62 DIOOW Sıpunıb sauyjopu.ap 06
(g/7 :aoyınyy Pp sumwooj,)) (L67T "PLq ‘SUTNaMaaTıaH)
SOPI-S 99 1210 ar) G'07 6'0€ ‘dep snauouno snosn[ souaygopuaop g
(1867 "1Pr1q
‘ONATHNIT, yovu %Z :aoyypmuoyag
“urpaogg "SM MONSOLL A "UIONaUON
en : TG] 'S 196] ANAMMADOOH X Suayamasıı
= "ICH :E97 'S "66T AUNAMULDOOH :TO9ST
fe TILZI'S '6 WO 'F "UMOL “NIALSNUAE)
= 3 790 #80 = 977-961 X TEE T'L7
° Lg 69 rz1l 0 9r'0 8'073 r'OE "au snarunant nz nf sauayjopıap 79
S (191JPMUOYOS “ULLIOgT
(E)9— F/P] (uosıanqg snpnb«4o} —) "Sn UIONayoN 089 '8 'gg6] AMuuvg
jpsun !QL8T ‘L8Z 'S ‘ez "WIO 'F 'umop ‘kay)
-qeH PyosrÄepe 'n wwangg-O “wnssy 3 390980 = 083-061 X 8TE-0'93
-M Sstq pdon 'n uerpuf-N :snosn/ (je A) snosnf 'n
UOIPUT-S N AA Son | 9 99 rs1'0 cero 805 1'8z | (soydg) sasuoppnaypu smosn/ sadygopı.ap Frl
(19JIJ9MUOYOS ! ULLIOET
"Sn SUDLUOE 'MONSOLL "A “UIONIUON
(9— 8/9 :1oeg]) 659 '8 'E86] Uauvg °'SAN "LIE "LVO)
rdon “wwssy- A sıq O Arqwog 3 9p°0—-FE0 = 177-881 X 865 -8°77
-M UOA N 'n pumg UA suoIpuf uBusgT] Yr‘g 19 OTTO 68°0 9°0% 1‘ı2 (uryyeg) snumubub sowoypop.ap 69]
(UIOYAUON SUOLIOE ! LTE 'S'EE6T ATMVEL)
‘ 3 09°0—-8P°0 = 977-805 X 678 9°
U0]A0Y 90:7, #1) SEIT O 2zg°0 SIEG G'6Z 08097] SNU1ajsoupppu sSuysuu SOLayJopıW ap PT
au ) p 8 d V
620
621
Sturnidae
.
.
Passeriformes
(g—-23/2 :ao91yeg)
(saguma —)
21] UOA SnwygST
stqg puejeqyL-S "ueumeH “euryg sogsyar
(4x9L Syaıs)
(umıog "SO ‘10J99MUOYaS “uroyayoNn
609 8 ‘8867 AaUvg ‘0I6T LUELUVH
“6887 ‘0P 'S ‘LE "UIO 'F UINOF ULLLANM)
3 08°0—0L'0 = 018-898 X 068 G'EE
-pns “wurgpopuf “ewuing ‘fedon “usrpuf-N %0‘9 G'2] LETO Lo L'SZ 98 Ar pıpaunayun wsorbiya4 DNMAH) LE
(19999MUOYOS !UIONAyoN
L(g)e/2 :ogeg]] 109 'S ‘EE6T ATAUVg SAW "Lug "LVD)
(sagupng =) 3 090-990 = 877-818 X G’GE—-F0E
uopka) :Arquog-g stq N uorpuf-MS | %g‘9 98 zo | 820 8'277 gg (1sTAng) worpun nsonbrpaa nnamıH) gr
(UIONAYJON :0TG 'S ‘EE6T Hanvg ‘aoDar])
(sogumg =) 3 090-370 = 198-978 X 2'9E— 608
uk | %9'T 16 110 | 080 635 GE yyAıg shuabond npnonıH) FE
(WIOYAyoN “ULLA !urog sum)
(g/2 : 1044041) 3790 = SEX LTE
(owuepurm-OS UOA AOL) stq 8. 9#°0 = 9°I7X 0°6%
uourddipyg-S 'n -pegusz | %g‘9 38 Ra | 733 318 yuein-"3g snpoupjow snama sdoams' ZI
(onbnpurıe uoA do) (sam "zug 'LvQ) 68x 4'78 !7°77X 0'€
uaurddıyg-N — G'6 — — L'8Z g'zE (snoeuur]) sna09 snaw9 sdoaumst Z
(MONAHOIAY 'n NYOMUHAN Yoeu)
usuowojeg 'n jodiyaıy NOreWusıgq a) 617 LF1°O 810 er 098 19yejogı 24/fouy uzuoump our Z
(g/2 : oe)
(1950293 owı 7 nz yone)
SUBAL, (139 'S ‘gg6T aaıvg)
zufAoIg SIq S euUIydopuJ 'n puejieuyT, 0°78 008 X 8'873 —-8°77
‘eunmg UoA JIeL ‘wessy “uspeduag-Q — oe — — £‘0% 19% ugÄlg snDu0.409 sdasıpduy £
eury9opuf 'n ueurepf (uag9LIy9sag age] Juyo LULLAYH Id) Jaogaey Stuuadıaauqg SNOIWIS11D SO1yIOopLay —
(umaog7} wınasnyy)
3 E70 -8F0 = 9°I8- 108 X L’0E- 368
(4109 12H)
®SOULIOT Ho Tı FEL0 08°90 Zaz 865 snunsoudof SnJomgsı410 sa4aygopıay F
(Oamuoyag uag
snm “MoNsoa] A “uIoyayaN 265 '8
(epeurg) doAnooueA Fne :4aadımgqad ‘9767 ZHDA0OL VI “saw "“uag "ıvO)
‚um :uozng (Y1oSıngosur [yoM) ‘fe, 3 310-190 = 0'893 061 X LEE -4'87
-osgdue pP SIq TSuoyog 'n ueuung wwang-O o0'L Ih, 9870 ze) 9°1% GıE (TI) smypamssı.10 snmamssı.10 sa4aygopı.ay 9p
sy 09) p n) q V
29. Ordnung
622
(g— 2/9 :sy1oqoy)
(eruoyg “wzuoy Z/0 :108nory
‘wpueny ‘oryngg g/O :ojjlAuouınogg op)
(waoyun) ouyo
SUTLAT 199) puwinng 'n peyen sıq wsıl
-UBdURT, UOA HUOZUOISNNT dOgNR) [EYEN
2
"N BURAMSIOE SI U9TUISSOAV-S "UBPNS-OS
(JaBaoyun PuUyo SULLaT 194)
BILWOS-N (8 aogne) uorumssoqy WOLLT
(87/0 :sy10goy)
(jeyen 2/7 !erquen g/z :1odnory)
ng Pduwaıg 'n
BYEN SIA JAOp UoA “uoruissogqy sıq [Bdouog
9% run \ S
SONY
(duydurg
nzq uote g/T 7/7 :SuamauaaTıay)
[(P94q50) sısuaunant = !soguma =
(uw9zO) AOyosıpuy ‘osuf
suwgsLiyg) :9198amgqoduro) Ipegg “ujosu]
wpung 9gom ‘psurgeH
(uouwwepuy-N UOA AOIS])
(sogpmf =)
UOAIBGODOIN pun UBuvwrpuvV
oyosıÄuju N
8°
0O/ n°
098
(IXOL Pydıs)
9° bir T; GLl
7 | 88000 | 820 sl
(YXOAL Oyp2ıs)
(YXO,L Pypıs)
GE #600 | 20 LT
(uSgOLIYJOSOq OcJeN Puyo)
vl L#1‘0 | 820 gg
0°%1 j =: P'0z
ET
977
1'727
(80 'S ‘1967 SLuaaoy)
g‘87 —8‘9T (TOT OST) X 0'034'77 #8
(1867 'ypluq ‘OonATH
-UNL, N HTILANONAUNOg aa yoru ao Z
ol 21088 ‘0L67 SUnvf ‘PI6I TEaHp)
8 37°0 = 981-891 X 695 6'87 LI
oyoun) 4ol/no snyouhiyıoayyhıo sndnydng
(Aojunyg)
snyouhyaoayyhıo snyoukyıonpkıo snbnydng —
(1867 "gpraq ‘OnATHASL "FL yoru 8 ‘WTA
-NONANOF Ha yoru Z ‘6P6] LNAONIA)
3 37°0— 17°0 = &°816'91 X 9'958'77
I snunoııfn snunoıufn snboydng 2]
(eye) wnıgnp unıgnp wngsoussiagt —
(uIoyayoN !797'8
‘6P6I AUAMUTDOOH :S8F6I ‘Ir VOpıy
“ANLIAYJHASNVWOOJ:SL'S ‘9767 uanvg)
3 98°0— 190 = V'LE- TEE X Y’LE-8'TE
rg »sorbrya4 Dsordrja4 DMMAH 9%
(609 'S ‘g&67 yanvg)
0°93-E 72 X69E-E°7E
(uBARIF) Isuaumwumpun »sordrıja4a PINODAH L
Passeriformes: Oriolidae 623
Familie Oriolidae, Pirole
Anordnung und Benennung nach GREENWAY in PETERS 15, 1962, S. 122— 137. Die bei
NEHRKORN (1910, S. 352—353) noch anerkannte Gattung Mimeta wurde inzwischen
Oriolus einverleibt, obwohl sie oologisch ihre Kennzeichen hat.
In der Regel etwas längliche Eigestalt (k = 1,36—1,47, einmal 1,66) mit ziemlich
starker Verjüngung des einen Endes. Entsprechend den drei früheren Gattungen
auch drei sehr verschiedene Hauptgrundfarben: bei Oriolus reinweiß oder mit zarter
Tönung in Rosa, bei Mimeta (jetzt mit Oriolus verschmolzen) hellgelbbraun, bei Spheco-
theres grün bis grünlich olivbraun. In gleicher Reihenfolge wird der Grund dunkler.
Die vorwiegend bei Oriolus aus schwarzen Punkten, bei den anderen (,,Mimeta‘““ und
S’phecotheres) aus kleinen bis mittelgroßen braunen Flecken bestehende scharfe Zeich-
nung ist sehr locker und meist nur wenig dichter nach dem dickeren Ende hin. Allein
bei Sphecotheres finden sich dort häufig auch gröbere Blattern in losem Kranz. Als
Folge leichter Löslichkeit des Pigments bilden sich oft „Brandflecke‘“ mit hellen,
in die Grundfarbe verlaufenden Rändern um den dunklen Kernfleck. Unterflecke
sind in der Regel kaum zu sehen und fehlen insbesondere bei Oriolus sensu strietu in
den meisten Fällen überhaupt. Stärker ausgebildete graue Flecke habe ich nur bei
O. chinensis celebensis und bei dem auch sonst abweichenden O. larvatus beobachtet.
Die durchscheinende Farbe entspricht der äußeren, ist also weiß oder nur leicht getönt
bei Oriolus, blaßgelbbraun bei ‚„Mimeta‘‘, grün bei Sphecotheres. Schalenglanz mäßig
bis stark. Unter der Lupe erkennt man das Korn als durchaus nicht glatt, wenn auch
nicht so grob wie bei Sturnus, sonst ähnlich. Die bei diesem häufige Rillenbildung
kommt auch bei den Pirolen vor, jedoch weit seltener. Bei den stärker pigmentierten
Eiern (,Mimeta‘‘ und Sphecotheres) zeigen sich die Poren minder deutlich als bei
Oriolus, sind aber auch bei diesen nicht so stark wie bei den Staren (Sturnidae) aus-
geprägt. Das Frischvollgewicht G beträgt 4,6—9,7 g (durchschnittlich). — Das relative
Schalengewicht (Rg — 4,8—5,9, einmal 7,3%) liegt meist bei 5,3%, das Relative
Eigewicht reicht von 6,8—10,6°, wie aus den in nachfolgender Liste ausgewerteten
Gewichtsangaben für Weibchen bei HEINROTH (1922), NIETHAMMER (1937), RıPLEY
& RABor (Bull. Peabody Mus. Nat. Hist. 13, S. 50, 1958), PALUDAN (1959), GILLIARD
& LEcRoY (Bull. Amer. Mus. Nat. Hist. 123, 1961), RıetLey (Bull. Peabody Mus. Nat.
Hist. 19, S. 45, 1964), Arı & Rırrey (1972, S. 113); DiamonD (1972, S. 297); DEAN
(1974, S. 170); ELG@ooD (1974, S. 136), LONGMORE (briefl. 1980) und auf Etiketten des
Zoologischen Museums Hamburg hervorgeht:
Q-Gewicht Art RG Q-Gewicht Art RG
ing in..9% ing in’ 9%
128,5 Sphecotheres v. vieilloti 1,2 71,0 Oriolus auratus 9,6
105,1 Oriolus szalayi ; 6,8 67,5 Oriolus t. traillii 9,3
98,0 Oriolus s. sagittatus 9,9 61,5 Oriolus oriolus kundoo 10,6
92,3 Oriolus ch. chinensis 9,0 56,7 Oriolus x. zanthornus 9,5
72,0 Oriolus o. oriolus 10,1
Oriolus szalayi (= Mimeta). Nur Nehrkorns Stück und zwei in Sammlung Huhn
konnten untersucht werden, gesammelt von Wahnes am Sattelberg in NO-Neuguinea.
Gelbbräunlicher Grund, wie bei O. sagittatus, nur sehr wenig glänzend. Unregelmäßig
gestaltete Flecke hell und dunkel olivbraun. Unterflecke grauviolett und graubraun,
um den Pol am stumpfen Ende meist gröber und dichter. Ebenso nach Ranp (Bull.
624 29. Ordnung
Amer. Mus. Nat. Hist. 79, S. 347, 1942) auf bläulichweißem Grund in verschiedenen
schokoladenbraunen und grauen Tönen gefleckt. — k = 1,44.
Oriolus sagittatus affinis (= Mimeta). Wie die folgende Art O. flavocinctus, eher
noch heller im Grund, weißlich bis blaßrahmbraun. Manche Eier kommen denen von
O. o. oriolus nahe, haben jedoch nicht schwarze, sondern braune Flecke neben einigen
blaß lila oder schieferfarbenen Unterflecken. — k = 1,44.
Oriolus sagittatus sagittatus (= Mimeta). Nehrkorns Stücke bieten vier Typen dar,
die auch für die andern Arten von „Mimeta“ gelten können. Erstens: gelblichrahmweißer
Grund, gleichmäßig verteilte, aber dünn gesäte rundliche Flecke hellolivbraun und dunkler
grau. Zweitens: blaßbrauner Grund, schwärzlich olivbraune und einige lilagraue
Flecke, die weitläufig überall stehen. Drittens: hellbrauner Grund mit Ring dicker
grauer und sehr dunkelbrauner Flecke am stumpfen Ende. Viertens: noch dunkler
brauner Grund, gleichmäßig locker verteilte, unregelmäßig begrenzte Flecke in Farben
wie vor. Nach den Beschreibungen durch die genannten australischen Autoren sowie
nach den Stücken in v. Treskows Sammlung und in der meinen herrscht der gelbbraune
Grund mittlerer Tönung und mäßigen Glanzes vor, ebenso die lose, gleichmäßige
Verteilung. Solche Stücke erinnern an ähnliche Eier bei Coracina. — k = 1,45.
Oriolus flavocinctus flavocinetus (= Mimeta). Im ganzen vielleicht etwas heller und
glänzender, auch öfter mehr am dicken Ende gefleckt, sonst wie O. sagittatus. —
k:=.1,43. i
Oriolus flavocinctus muelleri (= Mimeta). Die von MEYER (Zeitschr. ges. Ornitho-
logie 1, Taf. XVII) gegebene Abbildung, rosaweiß mit roten und grauen Fleckchen,
weicht von den australischen Eiern ab, aber diese Rasse kommt auf der Kap York-
Halbinsel vor. Ist das Ei richtig bestimmt?
Oriolus xanthonotus xanthonotus. Die wenigen, nur in Bakers Sammlung angetroffenen
Eier dieser Art sind warm rosa getönt und haben kastanienbraune und lavendelfarbene
Flecke. (k = 1,32, demnach bauchiger als die von O. x. xzanthornus.) Dies betrifft
Eier aus dem Nordwesten des Bereichs (nördliche Malayische Halbinsel). Im ent-
gegengesetzten Winkel, auf Java, sind die Eier nach HELLEBREKERS & HO0GERWERF
(1967, S. 160) schlanker (k = 1,39), weiß mit mäßigem Glanz, ziemlich dicht gelblich-
braun geflatscht, besonders am stumpfen Ende. — k = 1,36.
Oriolus oriolus oriolus. Die in der Regel milchweiße, glänzende Schale ist nur selten
zart rosa oder isabell getönt. Der Durchmesser der tiefschwarzen, nur beim Vorhanden-
sein einer nicht seltenen Penumbra bräunlich erscheinenden runden Flecke wechselt
am selben Ei von kleinster Punktgröße bis etwa 1,5 mm, selten darüber. Unregelmäßig
geformte Flecke nur ausnahmsweise. Ein abnormes, sehr langgestrecktes Ei, das am
stumpfen Pol braune Flatschen und Wurmlinien trug, beschreibt (ohne Maße) KIRCH-
BERG (Beitr. Fortpfl. biol. Vögel 16, S. 104, 1940). Länglich oval (k = 1,43). (Taf. 11,
Fig. 11.)
Oriolus oriolus kundoo. Wie die Nominatform. — k = 1,39.
Oriolus auratus auratus. Von den Eiern der letzten Art lediglich durch den pracht-
vollen rötlichen, auch gelblichrosa Ton der Grundfarbe und durch dunkel rotbraune
Flecke in einer Zone um das stumpfe Ende zu unterscheiden. Auch graue Unterflecke
wurden gemeldet, und gleichmäßige Verteilung der Flecke ist ebenfalls zu erwarten.
oo
Oriolus auratus notatus. Rahmweiß (auch weiß nach James 1970, S. 134) oder blaß
nelkenrötlich mit dunkel rotbraunen und blaß lila Flecken (Cuarın 1954, S. 126).
Passeriformes: Oriolidae 625
JAMES gibt außer rotbraunen und dunkelbraunen Flecken und Flatschen auch Striche
an und sah manchmal einen sehr deutlichen Fleckenring um das stumpfe Ende. VINCENT
(1949, S. 317f.) beobachtete intensivere Rosatönung der Grundfärbung um die Flecke
herum, manchmal auch einige schwarze Flecke, aber keine Zonenbildung. Er rechnet
diese zu den schönsten afrikanischen Eiern. — k = 1,39.
Oriolus chinensis tenuirostris, diffusus u. andamanensis. Wie O. auratus oft braune
statt schwarzer und zuweilen auch graue Flecke. Sogar der Grundfarbton zieht manch-
mal mehr ins Bräunliche oder Graue, bei tenuirostris fand BAKER (1933, S. 501), daß
fast alle Stücke einen rötlichen Hof um die Flecke zeigten, die wie ausgelaufen wirkten.
YAMASHINA (1939) beschreibt 26 diffusus-Eier aus dem Charbin-Gebiet als auf blaß
rosaweißem bis hellgelbbräunlichrosa Grund dunkel rosabraun geblattert. Ich sah
das dunkelste Rosa bei Eiern dieser Rasse aus Ussuriland in der Nehrkornsammlung.
— k = 1,38; 1,36 bzw. 1,36.
Oriolus chinensis chinensis. Entgegen den übrigen bekannten Rassen dieser Art
zeigen Philippinen-Eier keinen Unterschied von O. oriolus, sind also weniger rosa
getönt und dunkler gefleckt. Nach dem Car. Brır. Mus. (1912, S. 430) sind allerdings
auch fenuirostris und andamanensis nicht von oriolus zu unterscheiden. — k = 1,39.
Oriolus chinensis maculatus. Wie vorige weiß, weniger rosa gehaucht, schwarz oder
braunschwarz gefleckt, oft mit rotbraunem Hof um die „Brandflecke‘‘, vor allem
am stumpfen Ende. Hell- bis dunkelaschfarbene Unterflecke sind meist auffallend,
aber nur ausnahmsweise reichlich. Am stumpfen Ende gibt es oft einen lockeren Kranz,
und immer steht fast kein Fleck am schmalen Pol (HELLEBREKERS & HO0OGERWERF
1967, S. 160). Von Billiton beschrieb HELLEBREKERS (briefl. 1975) ein weißes Zweier-
gelege mit purpurbraunen Flecken und von Deli auf Sumatra ein trüb weißes Vierer-
gelege mit ziemlich kleinen, fast schwarzen Flecken, besonders am stumpfen Ende.
— k= 1,46.
Oriolus chinensis celebensis. Auf die starke Unterfleckung wurde in der Einleitung
(S. 623) verwiesen. — k = 1,42.
Oriolus larvatus rolleti. Rahmfarben, rosaweiß oder weiß. JAMES (1970, S. 134) erwähnt
als Unterschied gegenüber O0. auratus notatus, daß Flecke und Flatschen olivbraun
sind. Dazu fand Vincent (1949, S. 319) auch aschgraue Unterflecke. Nach ihm kann
die ohnehin vor allem am stumpfen Ende stehende Zeichnung einen Kranz bilden.
Sehr interessante Eier, wenn auch nicht gerade die schönsten afrikanischen, als welche
BELCHER (1930, S. 280) sie bewertet, der die Fleckung rotbraun und purpurgrau nennt.
— k= 1,43.
Oriolus larvatus larvatus. NEHRKORNS drei Stücke sind entgegen seiner Katalog-
angabe nicht rötlichgrau, sondern trübweiß mit gröberer Zeichnung als bei allen andern
der Gattung und stellen einen Typ für sich dar. Große rundliche Flecke, hellgrau, dunkel-
grau, blaß- und dunkler olivbraun, bis 3,5 mm Durchmesser, wenig dicht stehend,
erinnern etwas an den Charakter blasser Eier der Sylvia curruca. Die acht Exemplare
im Britischen Museum erscheinen z. T. noch blasser, manche wie stark abgewaschen
oder gebleicht, ihre hellgelblichbraunen, lehmfarbenen und blaß lilagrauen Flecke
sind meist breit verwischt, z. T. streifig oder kritzelig und nicht in allen Fällen mit
schärfer abgegrenzten, dunkleren braunen untermischt, auf weißlichem Grund. Nach
Cause (1914) ist die Grundfarbe weiß bis blaß rahmfarben, nach RoBerTs (1957, S.277)
rosaweiß mit einigen in einem Ring um das stumpfe Ende angeordneten olivbraunen,
braunen und aschgrauen, oft streifigen oder welligen Flecken. — k = 1,47.
Oriolus xanthornus xanthornus. Ganz wie die meisten Oriolus chinensis und ebenso
leicht glänzend. Daneben sah ich aber in der Sammlung Baker nicht wenige von einem
40 Oologie, 37. Lieferung
626 29. Ordnung -
ganz anderen Typ: vollkommen glanzlos, blaß gelbbräunlich mit hauptsächlich am
dicken Ende stehenden kleinen Punkten in Dunkelbraun und Lilagrau (nach BAKER
Fleckenring), eher an feinfleckige, braungrundige Eier von Dicrurus als an solche von
Oriolus erinnernd. Meine Bedenken widerlegte aber Baker durch den Hinweis, daß
diese Stücke einwandfrei bestimmt seien und für meine Vermutung zu groß. Ähnliche,
noch größere und mit gröberen Flecken erhielt ich durch Baker auch von ©. chinensis
tenuirostris. Sie könnten als Übergang zur früheren Gattung Mimeta gedeutet werden.
— k = 1,44. (Taf. 11, Fig. 12.)
Oriolus zanthornus ceylonensis. Viel heller als vorige, oft fast weiß, nach BAKER
rein weiß in der Grundfärbung. — k = 1,39.
Oriolus cruentus cruentus. Weiß, wenig glänzend, mit spärlich stehenden, purpur-
schwarzen, auslaufenden Flecken, besonders am stumpfen Ende (HELLEBREKERS
& HooGERwERF 1967, S. 260). — k = 1,46.
Oriolus traillii traillii. Ziemlich stark rosa getönt, nicht blaßgelbbraun, mit vor-
wiegend nicht schwarzen, sondern kastanienbraunen oder tief purpurbraunen und ver-
einzelten grauen, runden Flecken und Punkten. Die Verteilung dieser scheint häufiger,
als bei anderen Arten, eine mehr gleichmäßige zu sein. Dicht gefleckte kommen aber
auch hierbei nicht vor. Stark glänzend. — k = 1,42.
Sphecotheres vieilloti vieilloti und salvadorii. Zwei Typen, nämlich entweder grüner
Grund oder olivbrauner, aber auch dieser oft mit mehr grünlichem Einschlag. Sowohl
fast gleichmäßig locker verteilte, hellbraune kleinere Flecke, als auch große leuchtend
dunkel braunrote Blattern, am stumpfen Ende dichter, können die Zeichnung bilden,
mit oder ohne zurücktretende graue Unterflecke. Die groben Tüpfel neigen stark
zum Auslaufen, so daß oft das dicke Eiende braunrötlich getönt ist. Solche Eier er-
innern an oft recht ähnliche von Cracticus torguatus. Indessen scheinen bei wieilloti
die grünen Typen vorzuherrschen. Graublauen Grund, wie ihn NEHRKORNS Katalog
erwähnt, lernte ich nicht kennen. NoRTH nennt ihn olivbraun bis dunkelapfelgrün,
CAMPBELL grünlich, bisweilen bläulichgrün. Der Cart. BeıT. Mvs. sagt blaßgraugrün,
und meine Stücke sind hellgelbgrün. — k = 1,43 (Taf. 11, Fig. 13.)
Sphecotheres flaviventris flaviventris. Wie vieilloti. Nach CAMPBELL meist hellgrün
im Grund. Im Britischen Museum liegen grüne und braune. Die meisten, die ich sah,
hatten aber als Grundfarbe ein helles bis mitteldunkles Gemisch aus Grün, Grau und
Braun. — k = 1,44.
627
Passeriformes: Oriolidae
[Is —e)p/0 :yosyeen]
ueles-M
"n Teyyy ‘Tou-uessieg wueysaog “uRa]
-[equaz SIG OS “TOssıuap sıIq Q uasemm
0AUIOT-M N -S "eARp “eyourg
“eıyewng SIG WILOSSEUAL SOISUPIPNS
ujosuf nıy !eoummanaNn-S '"n
(puejsussn$)) YAIgqSH-sUme]) auayjonu
(ppunpyr =) (puejsusand) UOA
usplof, AOgne) uarmeagsny-N .sngoummoany/
(Aeswey sıpına =)
(us4sny7 sdug]) oprepppv sıq M eegeny
yqnog “erogory SOpeMpnsnaN “(MIOAR
deyy dogne) puejsusond) sSEpuageryasur
(puejsusand)) ueunon: 'n gpaey
-UOIOT SEN] FT AIp ur sıq Q uarergeny- MN
(esums
noN-S 7/7 :anvy ‘Brgpyges T/T)
(wumd 9 'n$),sniwugs = "Dpwipr —)
nase M
‘eyguegeg ‘Yemepes ‘[osın “eoumnanoN
rg
EL
Ng‘S
YET
ol
007°0
LIT'O
sor’o
6070
68°0
T8°0
LY°0
ETIe
le)
[e,)
-
8'737
v’Ez
287
Fo8
g'z8
6'8€
g’gE
(1293991
-Uoyog 'n A9440]YPS uodungwueg “FTZE 'S
‘9167 HOSLYNVJU Sne HOSLYHVM ydeu GJJ
‘SOAINASVM Ypeu GE ‘HLANAN ypeu 771
:ITE'S ‘1967 NAAHHYAA :LE6] YANMVH
-LHIN "SA "LIU "LVO “NIvAUNop ‘Xay)
(auy ‘3.0910 = 0'9T X L’6T :PSIOMZ)
3 090-830 = 4’E7—-L'6l
(F‘6r) x 0'881 (T'17 ‘9°97)
(7) snjor1o snj0110 SNJOLLG
(1967 AILMUTHOOH 9 SUANAYE
-ATIEH yoeu g ‘gT 'S ‘967 aıvg ypeug)
3 18°0 = S'6T-8'LTX 0'958 —-8°7%
PIOIJSIOH, snI0uoYyyunz sngouoyJunz® sSnJoNIG
(MONSOAT, "A “UIOYIyaN
“Saw "uIag 'ıvg “TIadanv) “HLNON)
3 120-170 = FE7—-8°T8X 078 -0°TE
((dgg) uoppnu n
(sIOF1 A) snYUDoanı[ SnY9UD0am7[ SnjoLIO
(19499 nU0Y9S !MONSOLL "A urjIogT
"Sn “uaoyayoN saw ‘"LIag "LVO ‘:Is's
‘067 Traaamvy) 'E8] 'S ‘688T HLUON)
3 990-870 = 697-817 X 098 0'388
(weygeT) snynymbos snawymbos snjoL1Q
(HER 'S ‘ZI6T "Sam "ua "LVd °64°8
‘06T Tıaaamv) !F8L'S ‘6887 HLNON)
372 -127X 198-078
‘pI9 seunf[n sngngmbns snjoLLO
(uıoyayan Sunjuuweg ‘7p67 aNvY)
1'32—-6°08 X8'78 -0°TE
(zse1epew) vinynzs snjoL4Q
LEL
LI
08
08
40*
29. Ordnung
628
(1OYPMUOYAS *uraogg "sn
"UIOYAUON :L96T AUEMYADOOH 9 SuM
HUITTICH :89% 8 6P6T AUNTMAALDOOH)
o9w1ogg ‘eg BARp sun Wy 3 #9°0—18°0 = 3'E7—-008 X 3 HE—E'LZ
-dunsg “uoyipjiep Bayeumg “ındvdurg [PSUuT %6‘r 50°0 LEO 91% Pau ES "A HRBmMDDu SISUauryI SNIOUO L
(MONSOLL, "A
“urlögg "SO "SO "wIugg LVO) "URLLA N)
("Ara snyouhry.«oin —) 3 990-180 = 887 8'058 X H'EE—9°08
uourddiprugg %,9°4 eg OTTO 9p°0 z’TE I sısuauryd Sısuauryd SNIOLUO GL
(u1oyayoN
"og 'S 'EE6T UONVe "Sam "Laer SLVD)
3.090780 = GET-6'61 X TEE 997
UDURUIBPUY HEg p‘9 860°0 pEo »* UVAVOET SISUAUPWUDPUD SISUAUYD SNIOUO TE
(uopaop snorpur —) (199 MUOYOS “urfaogg "En ‘SUOayOg] "UIoy
LSOULIO,T "N URUTTT -IUON ‘LS 956] STLVEL "SAW "Lug LVO)
"uyuop-N 'N SOVJ-N SIq S purjunss(] 3 990-820 = 873-008. Xg ER -—L'LZ
NM UORYWISURLL-O "UBAUOSIOZS UOA Mr'g 17 2010 seo e‘6Z odawyg snsn/fip sısuaunyd snJor4O P9
(197JPMUOYIS "MONSOLL, "A
"UIoydyoN :709 8 'EE6T MUNvVE 05 °8
(£— 7/2 :aoyug) “PI6T SIQL "NOLDNIUVH !'Saw "wg \LV/))
(80W77] 81ıq Q 'n wLIOSSTURL, SIq S) 3 370-680 = #37 0/61 XFTE—L'9Z
BWangp-[eayuoz ın uruun a A stq [edon-O Hz'T 19 a) VIE ira uNÄlgL Saso.0mu0] sısuaunyd SnJOW4O 0%
(Ver 's
(87/9 :sounp) 0L6I SUnVf 927 ‘L96] Suaumaoy)
UHISOPOUY-S 'n ISOqUIRSI Sıq 8°73—0°08 X 628-198
S uyıluudurg, Daez-N nm -gsıq Bfoduy-N 2‘9 — - 9°07 L‘8Z SIOJ9] ENDjou SnDınD SnJou4G X-4-2%
(GE6] TTaHS 9 NIvaunof)
(199° = q) (vpursj) SET XEEE N FE
uoBgg 'IW m uorussoqy-g sıq uSouog 89 { 861 ze "A INIDAND SNIDAND SNIOUO %
(19799 nuoyoS
"MONSOLL, "A "UILIOEL "SH UIONıyoN
I(r—-g)E/> :aoyug]] :005 8 'EE6] AANVE °'SAW “LIug] LVO)
91OSAN SIq g uorpur 'n vlepewnp 3 870-080 = 877-061 X 0EE—0'9z
-[BıyuoZ uwyosuvL], SIq O 999 eıy WOA ng‘ 09 0070 980 807 06% SOyÄg o00puny snjoro snJor4O GI]
Sy x) P Ö tel V
629
Passeriformes: Oriolidae
(sume) Z/2 :a95n914)
(I0WILT, UOA
"A spana qus SGLET “TLI-EIT 'S "SL
nwr ‘auoy yaeu) woumanaN-S !MIOR
deyy Sıq oplAasumoT, UOA .M4oPpDams
(puejsuson®)) SITTASUMOT,
(1867 "YPTIqg “ONAIHATTL, yaru
g :TOYOMUOWS ‘sap "“wuug "uvg !78'8
‘TO67 Taaaamvj) :08] 'S ‘688T HLMON)
3 790-870 = 978 -0'38X 8°98—9°08
adaeyg 22.10ppapos 'n
stq N AoupÄg uoA uareagsny-Q oma | %g‘g 6 LOT’O 670 287 ges | 'PIOH 9 "DIA Momaa ngopara sauayjoraydsı 97
(19999MUOYAS ‘MONSOLTL, "A “UIOHLIYON
(g/0 gstoun :101egg) 009 'S ‘EE67 AEavg "sam "LIag LVO)
turgoopu]-N “ueIs-N 3 98°0—93°0 = L’TIS— T'8T X L/0E-€'9%
“ueuuma-MN ‘(S dayne) ewang ‘elepewif | %08°G &9 g60°0 80 70% 0'6% (BIOS A) 2aypımag vywndz snjouLQ 8%
(eaep-M sne z/T) (ANIMAHHOOH 9 SYATMAYAATIAH)
enep | %8°P &8 960°0 0r°0 226 &ze (aOseM) snIuanıo snyuono smjoL1g @
(1049 MUgyag ‘FG 'S ‘GE6T UaUvg)
L(me/o :oeg] 3 980-920 = 318-681 X #65 —-GE7
ua) | ALS p‘C 0070 TE0 F°6I 0'12 -deg sısuauohad Snu4oyyunx snjouug FF
(T867 "OTIA
‘ONAIHUAL yoeu g !19999MUoyoS “Moy
-SOL], ‘A SUHIYOE “ultog 'SHnM “UIoyayoN
IF 2)g/0 :aoqegq] “sam "LIag] "LVOQ °2987 STgT ‘NVAvEg)
uoueunep 3 090-770 =
-uy uorpup josurgeH !snungndsnumpmu EIS ST X (E’EE) 9TE- TS
BULIOPUT “weis “eIskefen SO4sYyaTpIoU umyuerg snungpdsn.ımppu n
“eunmg “usIpuf-Jeayusz 'n -N !snusoyyunx IN: FG 160°0 630 F'67 0'87 ("T) snusoygunx snu1oyyupX smyor4O LL
(uIoY
- -IyoN ‘FI6I dadanHy ‘saw "“uag 'LVO)
3 080-980 — 873-987 X 9'7E-6°9%
puepmpng ‘egen purdey | %8‘F L‘9 980°0 180 c07 10€ YYOFT ERIDALH] ENIDAAD] SOWO ST
(eduegey] 'n uolsopoyf-S sne dor)
ejoduy sıq syaemgsom g wm (FET 'S ‘0167 SINVL ‘6F6T LNAONIA)
"n uorsopoyyg-S ‘eeAsueıg “onbıques TI - LIT X L’ZE- 18T
-OW SIq erfewog 'n uorussoqYy-S ‘uepng-g = GE = = 003 9'87 LIOPBAJES| 2797704 SNIDA.ım] SNJOUO Tz
(MoySOLL 'A ‘uriogg "Sn ‘uroyayaN)
3 270-090 = 087 0°78X 0°1E—0'87
sogopg-N 'n -eaguoz | %06'8 0 OFFO 170 117 00€ (uopfeM) 825090790 sısuaunyd SnJOUO &
3a D) p 3 a V
29. Ordnung
630
(S1aoysänzep doyep "purjsusond) ur Jay
AOFLIOA JUL HUOZYOSIA *O°T auo] yaru)
uoreigsny-ON 'n-N
[6) ‘
%8 G
88
0170
970
(199991
-UOyag ‘MOoNSaLL A ‘SuUBIyogg “UIONIYUON
“saw 'uiag "LVO !P8 'S ‘I0O6T TIadanvj)
3090-880 = 6'335 -3°1EX 8'9E—-L'6G
"PH sauuaaranyf sıquaaanıf sauoygoaayds‘ TE
Sy
o°-
Passeriformes: Dicruridae 631
Familie Dicruridae, Drongos
Nomenklatur und Reihenfolge, wie üblich, aus PETERS, Band 15, 1962, S. 137— 157,
wo VAURIE diese Familie bearbeitet hat.
Die Drongos sind im NEHRKORN-Katalog (1910, S. 354—355) mit 9 Gattungen
vertreten, PETERS erkennt außer Chaetorhynchus nur Dicrurus an. Die gestrichenen
7 Namen sind Chibia, Dicruropsis, Chaptia, Buchanga, Edolius, Bhringa und Disse-
murus.
Trotz erheblicher Färbungsunterschiede eine oologisch im ganzen recht einheitliche
Familie mit vorwiegend kräftig und bunt gezeichneten, oft etwas breitovalen Eiern,
deren fast immer glanzlose Grundfarbe überwiegend weiß ist, jedoch selbst innerhalb
der Art auch rahmfarben bis blaßrosabraun sein kann, bei einzelnen Arten überdies
fuchsig oder lachsfarben, aber niemals grün oder blau getönt. Daher scheint die Schale
weiß bis hellorange durch, entsprechend den Außenfarben.
Die oologischen Unterschiede der heutigen Gattungen und der früher anerkannten,
die meist nur eine Art enthielten, gehen aus folgender Übersicht hervor:
Chaetorhynchus: Kein weißer Grund; die blaugrauen bis violetten Unterflecke
fehlen, die bei den meisten übrigen Gattungen oft sehr deutlich hervortreten und
das bunte Bild der verschiedenen braunroten, purpurbraunen und schwarzbraunen
Töne in den Oberflecken beleben. Die Gattung weicht ferner etwas ab durch ihre sehr
dicht stehenden, meist überaus zarten, fast gleichgroßen Fleckchen, die nicht vieldunkler
sind als der hellbraune Grund, den sie überall bedecken.
Dierurus sensu strietu. Stark variant. Durchschnittstyp rahmweiß, am stumpfen
Ende mittelgroße, im übrigen nur kleinere Flecke ziemlich scharfer Ausprägung,
in rötlich- und kastanienbrauner Farbe, dazwischen einzelne dunklere Oberflecke neben
lilagrauen Unterflecken, von denen die mit abgerundeter Form meist überwiegen.
Die Grundfarbe kann nach Reinweiß und nach Gelbbraun oder Rosabraun abändern
und selbst lachsrot oder fuchsig getönt sein. Von den Fleckenfarben kann die eine
oder andere ausfallen oder auch überwiegen, so besonders hinsichtlich der fast schwarzen
Flecke. Stücke mit ausschließlich schwarzen Punkten scheinen nicht gerade häufig
vorzukommen und nur mit reinweißem Grund. Sie erinnern dann an Serilophus und
an Zwergeier des Pirols (Oriolus), aber ohne deren Schalenglanz. Breiter ausgelaufene
Blattern in helleren und mehr braunroten, aber nach BAkER 1933, S. 318, auch hell-
roten und tief purpurbraunen Tönen gibt es nur auf farbigem Grund, nicht auf weißem.
Manche klingen an rahmgrundige und erythristische Eier von Lanius collurio an. Neben
schlichten Gelegen also auch recht farbenprächtige, schwach gezeichnete und reich
gefleckte. Ungefleckte gibt es nur mit weißem Grund. Das nicht sehr charakteristische
Korn ist zwar ziemlich zart und glatt, erscheint aber unter der Lupe doch leicht gerauht
mit vielen kleinen Senken und läßt die flachen Poren oft gar nicht sichtbar werden.
— Der Zeichnungscharakter bei Dicrurus und der früheren Bhringa kommt oft nahe
dem von Tyrannus oder Lanius collurio. Die Flecke sind jedoch meist größer als bei
diesem, auch dunkler, und stehen lockerer, vorwiegend am stumpfen Ende, ähnlich
scharf markiert wie bei T’yrannus, manchmal aber auch stark verwischt. Den besten
Vergleich bieten die Eier des Eurylaimiden Psarisomus dalhousiae. Diesen fehlen zwar
die schwärzlichen Flecke der Dicrurus-Eier, sonst aber sehen wir hier ganz dieselben
drei Haupttypen: gewöhnlich weiß mit violetten und purpurbraunen Flecken oder
hellbräunlich mit ebensolcher Zeichnung, seltener ungefleckt weiß, mit vielen Über-
gängen.
Chaptia. Auf die bis D. annectans gehenden Dicrurus s.s.-Arten folgt die frühere
Chaptia aenea. Sie legt wie C'haetorhynchus keine weißgrundigen Eier, die überdies
632 29. Ordnung
keine Unterflecken tragen. Meist besteht die Zeichnung nur in einer dunkleren Walze
der blaßorangebräunlichen Grundfarbe.
Bhringa, jetzt Dicrurus remifer: Ebenfalls nicht weißgrundig, sonst ähnlich den
typischen Dicrurus-Arten, neben zarter gefleckten die am reichsten und gröbsten
gezeichneten Eier.
Chibia, jetzt Dicrurus hottentottus, und Dissemuroides, jetzt Dierurus andamanensis,
zeigen oft mehr gleichmäßige Verteilung und weniger große Flecke.
Dissemurus und Dissemurulus, jetzt Dierurus paradiseus, ähneln oologisch der vor-
vorigen Gruppe D. remifer, haben aber viel größere Eier, die überdies weißen Grund
bei einem der Typen, beim zweiten rosabräunlichen Grund mit oft nur verschwommenen
Flecken aufweisen.
|Gewisse oologische Unterschiede der früheren Gattungen, die meist nur je eine
Art enthielten, dürften aus dieser Übersicht deutlich geworden sein. Die Hauptfärbungs-
typen und auch einige Abweichungen seien jetzt zusammengestellt:
A. Einfarbig weiß: Dierurus a. adsimitlis, macrocercus (häufiger), leucophaeus, annec-
tans, paradiseus grandis (Ausnahme). Typ 1.
B. Gefleckt. 2. Grund weiß. a) blau, lila und (oder) aschgrau gefleckt: I. ludwigii,
paradiseus platurus u. paradiseus (auch etwas verwischt), p. rangoonensis, grandis, ceylo-
nicus, lophorinus (auch Längszeichnung), otiosus;
b) schwärzliche Fleckung: a. adsimilis, macrocercus, leucophaeus, annectans, hotten-
tottus carbonarius, bracteatus u. laemostictus, a. andamanensis, paradiseus formosus;
c) sepia und rotbraun gefleckt: macrocercus, leucophaeus, caerulescens (selten),
annectans, hottentottus:
d) rotbraun, braun und sepia gefleckt: hottentottus atrocaeruleus (Längszeichnung,
auch Kritzel u. Haarlinien), h. carbonarius (Schnörkel), h. bracteatus u. laemostietus
(Kritzel u. Haarlinien, purpurgrau wirkend), h. hottentottus und brevirostris (feine
Punkte), andamanensis;
e) tief purpurn gefleckt: paradiseus lophorinus (1 Gelege),
3. Grund rahmfarben (manche rosaweiß bis -gelblich). a) fein braun und grau ge-
punktet: Chaetorhynchus (ohne Unterflecke), D. h. hottentottus u. brevirostris, paradiseus
platurus, ceylonicus u. lophorinus;
b) fein braun und lila gefleckt: ludwigii sharpei, atripennis, forficatus, hottentottus
borneensis, paradiseus formosus (auch Wolken):
c) grob braun, lila oder grau gefleckt: a. adsimilis, leucophaeus, remifer (auch feiner),
hottentottus (bei bracteatus und laemostictus mit Haarlinien und Schnörkeln, rosagrau
wirkend), paradiseus formosus, paradiseus, rangoonensis und otiosus;
d) braun und oft längs gefleckt: hottentottus jentincki, paradiseus paradiseus und
rangoonensis.
4. Grund rosagrau mit braunen und lilagrauen Flecken: hottentottus jentincki, para-
diseus paradiseus und rangoonensis.
5. Grund blaßrosabraun (rosagrau), bräunlich und purpurgrau gefleckt: waldenii,
annectans, remifer, hottentottus carbonarius, a paradiseus, rangoonensis und
grandis.
6. Grund fuchsiggelbbraun. a) sepia, rotbraun und lila gefleckt: macrocercus, leuco-
phaeus, annectans;
b) wenig dunklere Fleckung, kaum Unterflecke: aeneus aeneus (ohne Unter-
flecke)
Passeriformes: Dicruridae 633
7. Grund lachsfarben. a) grob braunrot und lila bis grau gefleckt: a. adsimilis und
divaricatus, remifer, hottentottus borneensis (mit Marmorierung), paradiseus platurus,
paradiseus, aldabranus? ;
b) fein bräunlich und lila gefleckt: forficatus, remifer;
e) sepia, braun und lila gefleckt: macrocercus, leucophaeus, caerulescens, annectans ;
d) schokoladenrote Blattern: aeneus braunianus (ohne Unterflecke);
e) graue und lehmfarbene Punkte: hottentottus hottentottus und brevirostris.
Das Achsenverhältnis k beträgt 1,29 bis 1,45, je einmal erreicht k aber 1,50 (bei
Dierurus paradiseus grandis) bzw. 1,51 (bei D. paradiseus platurus). Das Durchschnitts-
gewicht G schwankt zwischen 2,8 und 7,4g, das Relative Schalengewicht zwischen
4,9 und 5,9%.
Nach Weibchengewichten bei HEINRoTH (1922), Mayr (1931), HoEscH & NIET-
HAMMER (1940), HARTERT (Nov. Zool. 36, S. 41, 1930), RIPLEY & RABor (1958, S. 52),
RAnD & Ragor (1960, S. 360 u. 412), RırLeyY (Bull. Peabody Mus. Nat. Hist. 19,
S. 45, 1964), GILLIARD & Lecroy (1967, S. 204), DIESSELHORST (1968, S. 201), Arı
& RıpLey (Bd.5, 1972, S. 121—142), DıamonD (1972, S. 302— 303), McCLuRE (Nat.
Hist. Bull. Siam Soc. 25, Table 13, 1973), FRIEDMAnN (Contr. Sci. 287, S. 21, 1978),
SHUKKUR & JOSEPH (Journ. Bombay Nat. Hist. Soc. 75, Suppl. 3, S. 1219, 1980) und
auf den Etiketten des Zoologischen Museums Hamburg ergeben sich folgende Relativen
Eigewichte:
Q-Gewicht Art RG Q-Gewicht Art RG
ing Inn, ine in%,
93,0 Dicrurus hottentottus 46,0 Dierurus macrocercus albirictus 12,4
atrocaeruleus 7,5 | 44,0 Dicrurus annectans 12,0
85,0 Dierurus paradiseus grandis 8,9 | 42,0 Dicrurus atripennis 9,0
80,1 Dierurus h. hottentottus 8,7 | 41,8 Dierurus 1. leucophaeus 9,8
74,0 Dicrurus h. laemostictus 9,9 | 41,0 Dierurus macrocercus
73,0 Dierurus paradıseus ceylonicus 8,4 cathoecus? a
71,3 Dicrurus paradiseus paradiseus 9,1 | 38,3 Dierurus c. caerulescens 10,4
71,1 Dierurus hottentottus 35,0 Dierurus leucophaeus
carbonarius - 10,1 longicaudatus 12,0
49,0 Dicrurus m. macrocercus 10,0 | 33,8 Chaetorhynchus papuensis 14,5
47,0 Dierurus leucophaeus hopwoodi 9,6 | 28,0 Dierurus ludwigii sharper 10,0
46,0 Dierurus a. adsimilis 9,3 | 25,8 Dicerurus a! aeneus 10,9
RG schwankt demnach zwischen 7,5 und 14,5%. Hrsg.]
Chaetorkynchus papuensis. Der rahmfarbene oder hell gelbbraune Grund ist überall
mit sich nur wenig abhebenden, fast gleichmäßig kleinen braunen Fleckchen dicht
besetzt, die am stumpferen der beiden fast gleichen Enden zusammenfließen. Da
und dort eingestreute braungraue Unterflecke sind eben noch als solche zu erkennen.
Zeichnung meist nicht scharf ausgeprägt, sondern eher verwaschen. Ein Typ für sich,
entfernt an feinfleckige Lercheneier (Alaudidae) anklingend, aber mehr elliptisch
als diese. NEHRKORN (1910, S. 354) nennt die Grundfarbe weiß bis rötlichgrau, doch
sah ich auch bei ihm solche nicht. — Die Eier erscheinen etwas groß für diesen Vogel,
verglichen z. B. mit denen der sogar noch leichteren Dierurus ludwigii und D. a. aeneus.
— k= 1,39.
Dierurus ludwigii sharpei. Wie wohl alle Arten dieses Dierurus sensu strietu (bis
einschließlich D. annectans, aber vielleicht außer D. atripennis, D. aldabranus, D. for-
634 29. Ordnung
ficatus und D. waldenii, von denen kaum Material vorliegt) stark variant, obwohl
für diese Rasse wenig bekannt ist. Nach Bates (1930, S. 530) länglich und nach ihm
sowie CHAPIn (1954, S. 5) glanzlos rahmfarben bzw. rosa rahmfarben mit verloschenen
Flecken und Blattern bzw. einer schwachen Zone von lila Flecken um das stumpfe
Ende. — k = 1,51.
Dierurus 1. ludwigii, tephrogaster, saturnus. Nach BELCHER (1930, S. 266) kleine lila
und braune Fleckchen, nach Caugg (1914, S. 105) grobe blaß braune und bläulich graue
Fleckchen oder fein braun, purpurn oder bläulichgrau, nach Vincent (1949, S. 120)
violettgrau und aschgrau überall, nach James (1970, S. 132) blaß rötlichbraun und
lilagrau gefleckt auf rein weißem (nach JAMES rahmweißem) Grund. In einem Gelege
(BELCHER) zeigte ein Ei einen ausgesprochenen Kranz, das zweite weniger, das dritte
fast gleichmäßige Fleckenverteilung über die ganze Schale. — k = 1,30. (Taf. 11,
Fig. 14.)
Dierurus atripennis. Bräunlichrahmfarben mit unregelmäßigen rosabräunlichen
Flatschen (PRIGOGINE, Rev. Zool. Bot. Afric. 64, S. 259, 1961). — k = 1,42.
Dierurus adsimilis adsimilis und apivorus. Ganz wie bei den folgenden indischen
Arten (D. macrocercus bis annectans) 1. ungefleckt weiß oder 2. weißgrundig mit kleinen
bestimmten schwärzlichen bis zu unbestimmten blaß rötlichbraunen Punkten, oder
3. alle Übergänge bis zu lachsfarben mit großen braunroten und violetten, manchmal
nach JAMES am stumpfen Ende zusammenfließenden Blattern. Meist vorherrschend
rotbraun, aber nach RoBerts (1957, S. 274) auch einheitlich nelkenrötliche oder
schwärzliche, also graue, Zeichnung. James (1970, S. 132) führt allein 11 Typen an,
außer den eben genannten blaß lachsrosa mit unbestimmten sehr blaß braunroten und
lila Fleckchen, lachsrote mit sehr wenig dunklerer Flatschung oder mit braunroten und
lila Flatschen, die fast nur das stumpfe Ende umgeben. Wie auch bei anderen Arten der
Familie auffallend abändernde Längsachsen, also breit ovale Gestalt neben mehr
gestreckter (k = 1,05— 1,50, i. D. 1,32).
Dierurus adsimilis divaricatus. Wie vorige Rasse mit sehr variablen Eiern. Von den
5 Typen, die ARCHER & GODMAN (1961, S. 1294) erwähnten, seien nur die zart lachsroten,
überall schwach mit einem tiefen Ton der gleichen Farbe marmorierten, aber in einer
scharf begrenzten Zone am breiten Ende durch ausgedehnte Unterfleckung violettgrau
gehauchten Eier aus Somalia erwähnt. — k = 1,33.
Dierurus adsimilis atactus. Nach TERHIVUO (briefl. 1981) rahmweiß mit mittelgroßen
und kleinen braunen und grauen Flecken, vor allem am stumpfen Ende. — k = 1,30.
Dierurus :aldabranus. BENDIRE beschrieb die Eier bereits 1893. — k = 1,85.
Dierurus forficatus forficatus (= Edolius). Die meisten der mir bekannten Stücke sind
weißlich-rahmfarben mit kleinen dunkelbraunen Punkten und Flecken. Danach scheinen
sie weniger zu varlieren als die von D. adsimilis, jedoch beschreiben Roc# (Ibis 1862,
S.274) und NEWToN (Ibis 1863, S. 348) auch lachsfarbene mit zum Teil verwischten trüb-
roten bis rotbraunen und blaßlila bis aschfarbenen Zeichnungen, zum Teil mit Kranz-
bildung am stumpfen Ende. Solche lachsfarbenen sind aber weder im Berliner, noch im
Londoner Museum, wenn man nicht dunkler rahmfarbene hierher zählen will. —
k = 1,40.
Dierurus waldenii. Nach BENnsoN (Ibis 103b, S. 86, 1960) schön nelkenrötlichrahm-
farben mit braunrötlichen Ober- und purpurgrauen Unterflecken wie dei D. adsimilis. —
k = 1,45.
Dierurus macrocercus albirictus, macrocercus, minor, cathoecus und thai (= Buchanga).
Die Eier der verschiedenen Formen dieser Art liegen in den älteren Sammlungen (seiner
Passeriformes: Dicruridae 635
Zeit auch im Britischen Museum) noch ungetrennt als „Buchanga atra‘‘, nur nach den
Fundorten auseinander zu halten, alle oft weniger reich gezeichnet als bei D. leuco-
phaeus u. a. Folgende Färbungstypen treten (bei der Nominatform nach BAKER) auf:
1, Ungefleckt weiß; 2, weiß oder rosaweiß mit nur schwärzlichen, höchstens noch einigen
grauen Punkten und kleinen rundlichen Flecken; 3, weiß mit auch etwas größeren,
isolierten Blattern in Sepia, Rotbraun und Lila; 4, hell siena bis lachsfarben und
fuchsigbraun mit Zeichnung wie vor, auch große runde Flecke, die überwiegend am
dieken Ende, sonst nur unregelmäßig und spärlich vertreten sind. Bei der Nominatform
erwähnen SHUKKUR & JoSEPH (Journ. Bomb. Nat. Hist. Soc. 75 Suppl. 3, S. 1219, 1980)
nur den dritten, wohl überhaupt vorherrschenden Typ: Weiß, überall rötlich, am
stumpfen Pol gröber gefleckt. 16 Eier aus Travancore (BAkER 1933, S. 322) sind fast
so klein wie die von Ceylon: 24,5 x 18,4 mm. — k = 1,37; 1,34; 1,34; 1,34 bzw. 1,31.
Dicrurus macrocercus harterti. Nach HACHISUKRA & UDAGAwA (1951, S. 22) iachsrosa,
grob schokoladenrot und darunter lilagrau mit Häufung am stumpfen Ende gefleckt,
wohl nach YAMmASsHINA & YamADA 1938. — k = 1,38.
Dierurus macrocercus javanus (= Buchanga). In der Reihe länglicher und dunkler als
D. leucophaeus vom gleichen Fundort Java wirkend (HELLEBREKERS & HO0GERWERF
1967, S. 157). — k= 1,41.
Dierurus leucophaeus. Nur im ganzen reicher gezeichnet, zuweilen Kranzbildung,
sonst wie D. macrocercus (siehe die dortigen Bemerkungen). Meist bleibt der schlankere
Eiteil beinahe ungefleckt. Auch hier die Regel, daß weißgrundige Stücke mehr kleine,
dunkle, scharf umrandete, isolierte Flecke haben, dagegen die mit farbigem Grund
größere, weniger ausgeprägte und hellere. Im ersten Fall geringe Löslichkeit des Pig-
ments, im zweiten stärkere. Kein Unterschied in der Eifärbung der einzelnen Formen.
Zusätzlich ist zu bemerken: Manche longicaudatus kommen D. remifer nahe. Selten
gibt es ungefleckt weiße (BAKER 1933, S. 330). — D. I. hopwoodi: Von dieser Rasse führt
BAKER (1933, S. 327f.) zwei hellere Gelege mit überall stehenden hell ziegelroten
Flecken und eins mit blaß purpurner Marmorierung sowie einigen graupurpurnen
Klecksen, ferner ein ungefleckt weißes an. — D. I. stigmatops. Nur fünf glanzlos weiß-
srundige Eier mit wenigen grauen, kastaninenbraunen und schwarzbraunen Punkten
wurden mir bekannt. GiBson-Hitr (1950, S. 115) beschrieb zwei ähnliche Zweiergelege,
die auf weißem oder sehr leicht ockergelbbräunlichem Grund wenige blaß purpurgraue,
hell- und dunkelbraune Flecke trugen, einige der Eier vorwiegend am stumpfen Ende. —
k = 1,32. — k bei den 8 in der Liste angeführten Rassen — 1,30— 1,35.
Dierurus caerulescens caerulescens, insularis? und leucopygialis. Wie die vorige Art,
bei leucopygialis sogar mit den seltenen marmorierten Eiern (BAKER 1933, S. 332), aber
bei der Nominatform fand BAkER diesen Typ und den mit purpurschwarzen Flecken
nicht, meist war der Grund lachsrosa und die Zeichnung reich (BAKER 1933, S. 331f.).
Ungefleckt weiße Eier fehlten beiden Formen. — k = 1,33 bzw. 1,29.
Dierurus annectans. Stark variant. Zeichnung häufiger als bei den vorhergehenden
Arten etwas längsgerichtet, was BAKER (1933, S. 318) und HArRISoN (Journ. Bombay
Nat. Hist. Soc. 59, S. 949—951, 1962) bestätigen. — k = 1,36.
Dierurus aeneus aeneus (= Chaptia). Hier eine weitgehende Konstanz des Färbungs-
und Zeichnungscharakters. Der fuchsiggelbbraune (nach ALı & Rırrey 1972, S. 128,
auch blaß lachsrosa) Grund trägt meist nur eine Kappe etwas dunkleren Tons derselben
Farbe oder verwaschene Flecke, seltener deutlich ausgeprägte rötlichbraune Spritzer
und kleine Blattern. Unterflecke treten kaum in Erscheinung. Manche Stücke gleichen
in der Färbung den Eiern der südamerikanischen Conopophaga. Ausnahmsweise fast
weiß mit rötlichen und grauen Flatschen vor allem am stumpfen Ende, also ähnlich
636 29. Ordnung
D. leucophaeus-Typen (BAKER 1933, S. 334, der auch ein blaßrosa Ei vom D. macro-
cercus-Typ erwähnt). — k = 1,33.
Dicrurus aeneus braunianus (= Chaptia). Nach YAMASHINA & YamanaA (1938, s.a.
HacHısuRA & UpaGcawA 1951, S. 33) glanzlos lachsrötlich rahmfarben mit spärlichen
schokoladenroten, schweren Blattern oben neben einzelnen lilagrauen Unterflecken. —
k = 1,34. (Taf. 11, Fig. 15.)
Dicrurus remifer tectirostris (= Bhringa). Grundfarbe rosarahmfarben bis hell braun
und selbst lachsfarben, nach BAKer (1933, S. 342) ausnahmsweise weiß. Die am breiteren
Ende dichter stehenden, sich teilweise überdeckenden Flecke in bräunlichen bis mehr
leuchtend roten und lilagrauen Tönen erzeugen ein schön buntes Bild. Diese Zeichnung
besteht teils in recht kleinen, teils in ziemlich großen Blattern, so daß man bei jenen an
rötliche Eier von Lanius collurio, bei diesen an erythristische von Dendrocitta formosae
himalayensis erinnert wird, abgesehen von der Größe. Manche zeigen einen Seidenglanz,
andere gar keinen. Viele sind breitoval, andere länglicher. — k = 1,41.
Dierurus remifer remifer (= Bhringa). Wie vorige. Selten sind nach HELLEBREKERS
& HOOGERWERF (1967, S. 159) die Zeichnungen dunkel und deutlich abgesetzt, noch
seltener sehr klein. Gewöhnlich keine Zonen- oder Kappenbildung, aber wenig Fleckung
dem spitzen Ende zu. — k = 1,41.
Dicrurus hottentottus atrocaeruleus (= Chibia; — Dicruropsis). Überall zarte Fleckchen,
etwas längsgerichtet, auch faserige Kritzel, wie bei fein geäderten T'hamnophilus-Eiern,
purpurbräunlich auf weißem Grund (Sammlung Nehrkorn). Auch PARKER (Bull. Brit.
Orn. Club 83, S. 127, 1963) beschrieb ein weißes Ei, das wie T'’chagra australis-Eier aus-
sah und glanzlos war mit grauen und lila Haarlinien, Flatschen und Wolken, über denen
leberbraune und sepia Flecke und Flatschen eine Kappe am stumpfen Ende bildeten
(Halmahera). — k = 1,37.
Dierurus hottentottus carbonarius (= Chibia;, — Dieruropsis). Manche wie durch-
schnittliche Dierurus-Arten (von D. ludwigii bis D. annectans). Andere aber zum Teil
ganz absonderlich gezeichnet. Von\Meek auf Fergusson gesammelte Stücke in Tring
und London sind auf weißem Grund teils überall spärlich tiefschokoladenbraun und
lilagrau bespritzt, teils dichter gefleckt in Purpurbraun und Violett auf rosaweißem
Grund, oder sie haben gröbere Flatschen in Bräunlichziegelrot und Purpurgrau. Ein
Stück in Tring, von Wahnes am Sattelberg (NO-Neuguinea) gesammelt, ist weiß mit
groben, purpurschwarzen Schnörkeln vom Charakter der Emberiza cirlus-Bier. Ähnlich
auffallend gezeichnet sind drei Stücke bei Nehrkorn aus gleicher Quelle. Bei diesen ist
der Grund weiß bis blaßgrau mit wenig oder gar keinem Glanz, das Korn weniger glatt
und von den eckigen, dunkelleberbraunen bis fast schwarzen, groben Flecken strahlen
verwischte Kritzel und kurze Haarlinien nach allen Seiten aus, die ziemlich gleichmäßig
überall stehen, wie bei manchen Eiern von Emberiza und Caprimulgus madagascariensis,
denen ähnliche von Dicruriden sonst nur noch bei laemostictus gesehen. Ein weiteres
Exemplar. Nehrkorns vom Sattelberg zeigt den Typ rosagrauer Eier von Lanius collurio,
also den rötlicher Dicurus, während eins derselben Sammlung von Fergusson wieder
weiß mit nur grauen und schieferschwarzen Flecken ist. Die Variation läßt also nichts zu
wünschen übrig. — k = 1,42.
Dierurus hottentottus bracteatus und laemostictus (= Chibia). Zum Teil locker fein
punktiert, aber auch mit einigen gröberen, besonders bleigrauen und schieferschwarzen
Flecken, mehr oder weniger rundlich, zwischen kleinen solchen und Punkten auf
weißem bis blaßrosa getöntem Grund, dichter am breiteren Ende, wie auch bei Dierurus
sensu strictu vorkommend.
Passeriformes: Diceruridae 637
Außerdem aber, wie besonders bei laemostictus, oft einen ganz anderen Typ zeigend,
der bei Dicrurus sensu strietu noch nicht beobachtet wurde, nämlich ein die ganze Ober-
fläche leicht oder schwer bedeckendes Gemisch von wenigen dunkler braunen Blattern
und vielen hellerpurpurnen, grauen und weinroten Wischflecken und Schnörkeln ver-
schiedener Größe und Gestalt auf einem Gewirr von unzähligen kleinen zerfaserten
Stricheln und Kritzeln in braunen Tönen, im ganzen dicht purpurgrau und bräunlichrot
marmoriert erscheinend, manchmal weniger dicht und in recht hellen Schattierungen
auftretend, dann besonders schön. Bei allen sind die lilagrauen Unterflecke als Punkte,
Strichel, Wolken gut entwickelt und von gleicher Menge wie die rötlichen oder bräun-
lichen Oberflecke. Wahrscheinlich gibt es diese recht verschiedenen Färbungstypen bei
sämtlichen Arten dieser beiden Gattungen (Dierurus s. str. und Chibia), wenngleich
wegen der zum Teil nur geringen Anzahl vorliegender Eier bei mancher Art nur die eine
oder die andere Zeichnung oder Zwischenstufen bisher gesehen wurden. — k = 1,42
bzw. 1,38.
Dicrurus hottentottus bimaensis. Ähnlich D. paradiseus formosus, aber feiner gefleckt.
Auf kalkweißem Grund sehr dunkel braun fast schwarz scharf gepunktet und gesprenkelt
mit noch auffälligeren weinfarbenen und violettgrauen Unterflecken. Obwohl überall
stehend, drängt sich die Zeichnung in einer Zone oder Kappe am stumpfen Ende
(HELLEBREKERS & HOOGERWERF 1967, S. 158). Ein anderes (?) Zwerggelege aus Flores
ist nach HELLEBREKERS (briefl. 1975) grauweiß mit schwärzlichgrauen Flecken und
ähnlich einigen Caprimulgidae. — k = 1,45.
Dierurus hottentottus leucops (= Chibia). Anscheinend nur der gewöhnliche Dierurus
s. str.-Typ bekannt, dunkel purpurbraun und vorwiegend hellgrau zart gefleckt auf
‚weißem bis rosaweißem Grund. — k = 1,44.
Dierurus hottentottus jentincki (= Chibia). Rosagrau mit einigen rötlichbraunen Ober-
und (wohl grauen, W. Meise) Unterflecken (HELLEBREKERS & HOoOGERWERF 1967,
S. 158). — k = 1,42.
Dierurus hottentottus borneensis (= Chibia). Glanzlos rosaweiß mit nur sehr kleinen
blaß umberbraunen und lilagrauen Fleckchen und Punkten auf der ganzen Oberfläche,
fast wie bestäubt. Ferner nach SmYTHızs (1960, S. 501) sehr blaß lachsrot, überall mit
rötlichen Oberflecken und darunter grauen Punkten und Marmorierungen, die besonders
am stumpfen Ende stehen. GıBson-Hırr (1950, S. 115) beschreibt ein rauhes, ovales
Zweiergelege, das auf weißem Grund vorwiegend am stumpfen Ende grob blaß neutral-
grau, blaß purpurgrau und mahagonirot geflatscht ist. — k = 1,39.
Dierurus hottentottus hottentottus und brevirostris (= Chibia). Im Gegensatz zu den
kleineren Dierurus s. str.- und D. remifer-Eiern meist länglicher oval, stärker zugespitzt
und mit fast immer nur winzigen, oft verloschenen Punkten und Fleckchen, beinahe
gleichmäßig verteilt oder mit Verdichtung am stumpfen Ende. Auf weißem Grund neben
grauen und lehmfarbenen Stipperchen auch dunkelsepiabraune Punkte, die den Stücken
mit rosarahmfarbenem oder blaß lachsrötlichem Grund in der Regel ganz fehlen, wie
denn die Zeichnung meist ganz unauffällig, jedoch weit verbreitet ist. Gröber weinrot
und grau gefleckt war unter vielen anders gezeichneten nur ein Ei im Hamburger
Museum, für Siemssen in Fukien gesammelt. Zuweilen eine Spur von Glanz, sonst matt.
— k = 1,38.
Dicrurus andamanensis andamanensis (= Dissemuroides). BAKER (1933, S. 339)
zitiert und ergänzt Osmastons Beschreibung (Journ. Bomday Nat. Hist. Soc. 17,
S. 156, 1906), wonach beide Typen von bracteatus (s. 0.) hier auftreten. — k = 1,36.
Dicrurus paradiseus platurus (= Dissemurus). Wie die Nominatform. Das von Coomans
de Ruiter mitgebrachte Sumatra-Ei ist nach HELLEBRERERS (briefl. 1975) rahmweiß
638 29. Ordnung
mit zarten dunkelgrauen Punkten und mißt (abweichend von unserer Liste) 28,8 x 20,8
—= 0,38 g. — k = 1,50.
Dierurus paradiseus formosus (= Dissemurus). Auf weißem bis blaß rosa getöntem
Grund eine schwere, stark kontrastierende Zeichnung aus mäßig vielen, großen, fast
schwarzen und sepiafarbenen, mehr oder weniger (nach HELLEBREKERS & HOOGERWERF
1967, S. 159) scharf begrenzten, oft auch mit ausgeblaßt rostbraunen Flecken und
Punkten, also anders als bei der Nominatform. Eine Neigung zur Kranzbildung wird
von Schönwetter (MS) bejaht, von den beiden genannten Autoren verneint, die überdies
einen rahmfarbenen Typ mit spärlichen kleinen Punkten, Wolken und Unterflecken
erwähnen. HooGERWERF (1949, S. 267, Taf. 19, Fig. 300) bildet ein ganz dunkles Gelege
ab, daneben aber ein weißgrundiges mit sehr blasser Zeichnung und fast nur Unter-
flecken. — k = 1,34.
Dicrurus paradiseus paradiseus und rangoonensis (= Dissemurus). Im wesentlichen
zwei Typen. 1, Grund weiß bis rahmfarben mit vielen großen rötlichbraunen bis wein-
roten und violetten, etwas verwischten und nicht sehr dunklen Flecken und Flatschen
besonders auf der dicken Eihälfte. 2, hell rosabraun bis bräunlichlachsfarben mit
wenigen kleineren, zum Teil verloschenen, mehr einzeln stehenden, hell braunroten und
bleigrauen Flecken eher rundlicher Gestalt, die zuweilen am breiteren Ende in eine
trübgraue Wolke zusammenfließen. Nach NEHRKORN sollen auch bei Dicerurus hotten-
tottus ähnliche Stücke vorkommen. Die Gestalt aller Rassen ist etwas lang oval mit
kräftiger Verjüngung des einen Endes. — k = 1,38.
Dierurus paradiseus grandis. Nach BAKER (1933, S. 347) überwiegt mehr die bräunlich-
rosa Grundfärbung statt der rein nelkenrötlichen der beiden vorigen Rassen. Die große
Variabilität in der Fleckengröße zeigen unsere Abbildungen. BAKER kennt auch ein
weißes Gelege mit dunkel purpurfarbenen Flecken und Flatschen. — k = 1,40. (Taf. 11,
Fig. 16 und 17.)
Dierurus paradiseus ceylonicus (= Dissemurus). Nach BAKER (1933, S. 350) rosagelber
Grund mit rötlichbraunen und lilagrauen Fleckchen oder weißer Grund mit dunkel-
grauen Flatschen und Flecken oder mit blaß lilabrauner Wölkung und Fleckung, also
Typen, die oft auch bei den übrigen paradiseus-Unterarten auftreten. — k = 1,29.
Dicerurus paradiseus lophorinus (= Dissemurulus). Bakers Stücke ähneln hellen der
Nominatform. Weißer bis blaßlachsfarbener Grund, zuweilen lilagrau getönt. Blattern
und Fleckchen rotbraun, Unterflecke lavendelgrau, meist fast gleichmäßig verteilt,
aber doch am dicken Ende etwas dichter. Nehrkorns einziges Stück erinnert an blasse
Eier von Tyrannus melancholicus und hat auf weißlichem Grund ziemlich überall kurze,
längsgerichtete rötlichgraue Unterflecke mit einigen groben, schwarzbraunen Punkten
dazwischen. — k = 1,38.
Dierurus paradiseus otiosus (= Dissemurus). Wie die Nominatform. — k = 1,35.
639
Passeriformes: Dieruridae
BUryUH PO T/L :19Snaııy
ID %PO UT 1
B[OSUy-N NOS (ag vyrlurdur,) (1861 'IPLIq “ONAIHNTTL, 'L)
TaL Tztzuyg 'n BLIOSIN-S Stq ouoor] waraıy | Yor'g sr 7600 9°0 1'617 877 JOS[OYIOIO ERODID SYVUNEPD ENnIMKUT |
[LEGT ‘01 'S ‘LT word
[00 ‘HOITT-NOLHHNOT !uUoy9so5 uurw
NON 199 GE6T “TIOD aoypay !('JJ09 aodury
(g—%/2) -I57 A) "W/gangguRag ‘Saoquoyouog sn]
(2 °H SWWqnbn] "Tyosuro) 3 330-210 = ESTG FIX GHZ G‘LI
erpewog sıq jesousg | %9°G wi 180°0 670 697 775 CHPTT) SnPNADaıp sıyuunspn SniMmAmGT 67
[Mossorg "A “Sn MIT KEET'S ‘OL6T)
I(#-g)e/>] SINVF yoru GIF :(T96T ‘693 8 ‘#9 "TV
[(uoq ‘907 [007 Aa) MNIDODIAT (051 8
-orIyosog ENLıV- MS ne gz6T “Aosurg “6H6T) INMONIA *(ETZ’S ‘0F6T) van
snioArde pun) sıogog wubnf "Tgeryos -WVHLAIN 9 HOSAOH !(9761 ‘6TL'S ‘Zu
-um nbunyong = *“(yyprg) «ofn =] "uıg 'F "unof) YELSAHOS ‘FI6T AadaHy
(prem :(8161 ‘Ig'S ‘79 ug 'F 'umof) nıouy)]
-u9do] Huyo) Bfoguy 'n O1 Z-OS STq 8 880-810 = C'6T— SIT X 8'Lz—-T'6T
SYaeMpns wIuoyp 'n vpuwdn uoA wyngvy | Yor‘c er 880°0 a) Est Ire (urOg4syp0) sıpunspm sıunspn snanaaug 887
(693 'S ‘T96T ENIDOHIUT Yoru)
TLIXGF3 ’PLIXLFZ
[EL PITWOS sIq ungen) 'n auoaT wareıg = g‘e — — Go 977 UOSUTBMg sauuadaıd SnaumaauT Z
(fegeN 7/) :a1PSnaay[ (T86T "JPTIq “TTTIANON
simepen] ‘ofoyn g/2 :ojpAauounmog op) -1NOg Ta 'n ONAIHYTL yoeu Z al !zeT 'S
R[oDUuVy ‘0L6T SUamvL 071 'S ‘66T LNAONIA
-eguwozZ-MS SIq vduegey; !smuuns '693 'S ‘0867 AHHOTAg ‘FI6T AEaHy)
TMEIeN-S “UOISOPoyrg-S 3 110-910 = F'ST 091% 4°33—9°L1
-HO ‘onbrqueson sodtıgn 2.095 mbo4ydor 9161
jewAsurıf-oO pun onbıqwes “Kooueg snumgws 'n ‘9L6T “Aaaurgg) 4aswb
-on ur ododwrg sıq puepdeysp-Q :ubımpny | %g'g Tg 800 ıT0 297 0% -044d07 *(yyrwg) vıdımpny vıbımpny snınaauT Pz
(1/9 :soyegr) | (BEI 'S ‘0861 SOrr)
BILSST G‘9T 09T X 075 0'377
-M 'n uRpng-g “erwwog-N STq Te3ouog| — 8 — -- Fake | 0'Ez gopegsng radunys nbımpny snıniou] —
(19J99MUOYIS “MONSOLT, "A “UIONIUON)
(Srogjoggeg oA doı) 3870-980 = 6°61—-0'81 X #87 —-1°7g
swoumanon oaugen | Kıc | 67 | 8800 | gz‘o | L'st | 0'%8 aokom sısuandnd snyouhrlıopmyn L
Sy s) 1% 3 q V
29. Ordnung
<
_
640
gg — gr pw aoısg oydsııy U9don (086) HAUSOPr P WANMAHS (1
(uouvLiep) BIOY :gaodıngoduro ERSOULIOT _- 8‘g — _ 00% 012
weuuy
Sg ‘werg-aguoz 'n AS “WnossBUuo], = 0'r y= =, 6L1 r'67
1.ANYOSP
-uB SIg wurgg “uwumpy ‘(uoyonT
uw) wurgpopuf sIq vwung-M nm MN Hs‘ sr 0010 550 881 "ug
(£—7/2)
uoLko) Re sr n e= 1'81 377
[#/o 1 :g/o 99
:ydosop x anyynys :(9—g)F/ : og] ]
(9I09UVARLL g/T :19dnoayy)
[(uuwuı
-19H) »40 nbunyang :NAONUHAN 1094|
uoıpuy psugqwH | %6's | (16'r 010 | 680 061 903
N 0% SIq Bago Jiwaoyuf) uogsyorwu anz
U9OULIOFUSYOSIMZ !sodund sıq Sg “(wagnd
-swyeig WOA N) WBSSY-OQ SIq UWIT-ON HET LG 160°0 080 861 L'LG
(UHAOWON)) HYYOAL = 66 =- — 26] 9'87
(snıJopHF =)
YEL ISSON 'n auysuärpun | %g'G LF 0600 | zo r'sI 10%
WIQLP]V [OSU] °g = — 66] P'9%
a 3) p 2) dl V
(8E6T ‘ET MOL 'vavnvA N VNIHSYNVYA)
Zunpiqqy yoru oe
AOMBEL 27.0710 SNDLIIOLIDUL SNANLIUT
(E87 8 'EE67 Nav yowu)
SSOJ N 297 SNILIIOLIDU SNAMADUT
[uıoy
-IYONy (108 8.9767) AHONOL VI !(698 8
‘P761) yauvgr (675 'S 0761) wuazuvg |
3 380-830 = L’6T 0/81 X 913-083
D9OUUIAS SNJ90YD9 ENIALIIOLIDUL SNAMALIUC I
(33€ 8 ‘E86 aıvg)
26T —-Z'LIX0'LS- 8'373
ung JOUVU ENUIIOLIDUL SNANAIUT
(1861
"pLıg ‘ONAIHMLT, ® yoru JOH rn ‘19949M
-UOUDS ‘su9ayog] !IZE AS "8S6T Yayvg)
3 F8°0-61°0 = 908 1'LIX E67 —0'E3
(‘ A) SNILIIOHIDU SNDIIIOLIDUL SNANLIUT
(107991
-UOYOg “UNO "SEN ‘TGE 'S 'EE6T MANVg)
3 980-920 = 118 0'81 X #63 —9'E2
(uosöpoH) SRTIAUNG]D SINIALIIOLIDUL SNANLIUT
(09671 NOsNag)
(#08 ») 108 8'617 X 860 —- 8'123 (975 )
[PFI]YIS VuopDm SnAmAaUCT
(AOYPMUOYAS ‘suoayag “urfıogg "Sn “uUIoy
-IyoN "sam "LIug] "LVO 'E98T NOLMAN
"v ‘7987 HOOY 09T 'S ‘LLST TAvLLıVH)
3 08°0—-08°0 = F6T -T'LIX 06° —#'27
(T) 8 ‚morfıof snwar/ıof SNANAIUT
(auranag) 861 X 198 SIq S'ST X 7'907
(Anandpıy) SNUDAIDPID SNAMADUCT
a
8G
IG
00%
09
08
8
Erkrankungen der Zootiere
- Verhandlungsbericht des XXI. Internationalen Symposiums über die
. Erkrankungen der Zootiere vom 28. Mai bis 1. Juni 1980 in Arnhem
f Zusammengestellt und bearbeitet von Rufolf Ippen
und Hans-Dieter Schröder N
t ”
1980. VIIL. 327 Seiten — 78 Abbildungen — 78 Tabellen — 4° — 70,— M
Bestell-Nr. 7626772 (2136/14)
Me
Seit 1959 werden jährlich Symposien über die Erkrankungen der Zoo-
tiere veranstaltet. In an von Verhandlungsberichten erscheinen
sämtliche zu.den Symposien angemeldeten Referate bereits vor dem
jeweiligen Symposium und bieten somit eine Sun: gute De
grundlage.
Bitte richten Sie Ihre Bestellungen an eine Buchhandlung
AKADEMIE-VERLAG
DDR - 1086 Berlin, Leipziger Str. 3—4
’
Eine Einführung in die medizinische Zeibioogie
E
F en
1980. IX, 314 Seiten — 138 Abbildungen — —_ 8° — 2, — a 2
Bestell-Nr. 7627580 (6558)
Erkenntnisse im Bereich der Zellbiologie gewonnen worden, die ct
a BEN
sowohl auf die Struktur und die Funktion der normalen Zellen Ye;
=
Erkrankung wesentlich ist. |
Bitte richten Sie Ihre Bestellungen an eine Buchhandlung -
= Par
AKADEMIE-VERLAG
DDR - 1086 Berlin, Leipziger Str. 3—4
HERAUSGEGEBEN UND ERGÄNZT VON RR PEN
Ei
a Prof. Dr. WILHELM MEISE
$
Me, Zoologisches Institut und Zoologisches Museum Hamburg : N NE
A Hl ER 3
N: un ae e N 3
$ ES EN % \ 7
RR RK ’ Bu? Tief \ RENT, ! i ERROR
Me 38
TE Lieferung 3 I RR
BEER INT ” s Zr DIR R f \ er
Mu N - 7 # . a LAN
> „ 4
> 3% 4
” en
2
5 Ke
s f T
’ ne
7 x er F% i
« \ $ en
2 = D Se B
- u £ ” % %
R Tupac
} ° N fi ‘
4 N
n E “&
£ > r N
= < 7 N
} nd
/ F N 3%
® S 5 Ha
ie ER E
us & x x — l
REN:
„
4 - #
Page
5
Bi N X x
\
ir x a
f
\ ’
x -
* [ >
P2 S x
r 2
3 Ä
r > NE En
als: = x Y
DAFADEMIE- VERLAG - BERLIN... ®
er k D x _
De gas‘. RI N, Bardır
Ä | neztss 1 _ ai
ya N PP NE Tafel 12. a ee
1
" - INHALTSVERZEICHNIS FÜR DIE LIEFERUNG
X : Familie Callaeidae. . . ... - ü E ' ’
: Familie Grallinidae ..... |
.. - TS 4 P a:
Er Bamilie Arkamidae.. :. 27 2m SER RE Tee re
.71* .. . B +
Be Familie Gracticilae 74.2 ide. Sala a re ee Pe
| 2%: Familie Ptilonorkynichidae. ., ) a EBENE FRT
n Ri Familie Parädisasidae "...-. 302... ee ar ee ae EN
RP: er P 2 u D) BE IE
Hamilie: Gonvidae 7... 1 22H a ee Re le ee
y A ’ ;
j s y . 2 > ß ’
er 5 :
, eK
-
[4 u.
ea, h is ri } x 3
> {
—_ 1” =
E F _ ä
5 £ j
” \ F} : e
r 2 / d
£ f B
% fi y
IE - - Exschienen i im Akademie-Verlag, DDR- „1086 Berlin, Leipziger Straße :
? | © Akademie-Verlag Berlin 1983
We | Lizenznummer: 202 - 100/4922/83
rn "Printed in the German Democratic Republic
je: | Gemamthrastelliuig: VEB Druckhaus „Maxim Gorki“, 7400 Anenburg L
Erz RE IV
fe | BA Bestellnummer: 763 029 6 a |
fä: 3 et Sa
Be fi =
rt x Ed . c
Er na Fr \
en #
er r A n
9 ar =
3; { = ’ 4
A 3 .
4 . ‘
h z er £ >
M b ä E u p ;
2 > 3 Be, £ -
a 7
641
Passeriformes: Dicruridae
e—)z/ol
(BARP UOA AOIf])
(pbupyang =)
degepegg m
urareg Sfoqwor “wg "wArp “anpewig
(pbunyang =)
(njegg wuryg) O9WIOEE-N
ururcd
le z)H/>)]
(uorpn,g sne aoız])
(pbunyang =)
NSUBN-S 'n Toanyosp
-URA-S SIq Burg) yoanp Sungsuray-ON
[ONE sungangsıp "[yasum
:sogro Suoosa4hru "aııveg 199 7810
woomaum »bunyong :NUOMUHEN 104]
[psurgfeg] OyostÄAr]
AN "Ppureyp- MS "weuuy-Jegusz
sig purwyp-N wamg-S 'n -eayuoz
Kg g)p/ :aoeg]
(nbunyang = !aoyegg ısuaaals "Tyosuro)
ADS) EL
BUrDOPUTF 'n Bunımg yoanp uopBduasg UoA
L@)P 8/2 :1oyeg]
(pbunyang =)
WINSIS SIG UBISTURUSFV-O
(ge 8/0)
eg pun rare
Lg
r)
/09
Te}
Hs'E
(0) (4
094
1600
960°0
960°0
360°0
760'0
160°0
180°0
950
950
641
8's]
0'81
tal
0'77
v7
(MONBOLT, A “10yI9MUOUOS
:LST'S ‘1967 AUIMUTDOOH 9 Suaaauaaıı
ISCH 5995 'S '6H67 HUTMULDOOH '6487
Fız'S ‘L "WO 7 "uUmop “NIEISNUME)
3 180-61°0 = 46T 011% 995 T’TZ
"A sSnoanydoonay sSnonydoona]) snaundarc
(su9ayag]
SUIONIUON ‘GIT'S ‘0965 TU-NOosary)
2 6980-830 = L’61 -T'LIX 095 4'773
(sdıryg) sdoppwbus snonydoona) smunaou
(0767 ‘097 "89T "1007 "AON “LAREUVH)
(voyums) snXauun snonydoonay snandouc]
(FE’S 'GO6T SIQT "LLANOLYy 9 THDAOL, VI)
3830-180 = 061-811 X F9g 917
(usppe M) swuaboona sSnonydoona] SMAMADUT
(1a599PMUuoyaSI
“SUDLYOEL "UIONIUON "FGE 'S "BE6T YaNvg)
3 61°0 = 88T -E'L1X 993 9'173
(uHpje M) Yoynous SNIMYÄOIN SMANAIUCT
(19999 MUuoyaSI
008 8 'gg6I Yaavg °'Saw “wag "LVD)
3 080-1280 = 008 EL1X GL 6‘ 18
ou] »poomdory snonydoona]) snAmdauT
(088 8 'gE6T Aavg Sam "LIag LVO)
8 180-LT0 = 3'617 -0°L1XL93 31%
uopaop snynpnoanbuo] sSmonydoonay) snAmAauT
("F9GT 'S ‘1961 ANAMUTHOOH 9 Saaı
-HUSHTIOH °895 9 '6P6I AUaMUHDOoH)
3 830-830 = 861 6'917 X L'85 887
SON SNUDADE SNILIOLIDU SMANADUT
YL
8
OT
0%
iz]
41 Oologie, 38. Lieferung
(BIoywuep] UOA AOIS])
(may =)
vaoygwwpep 'n urlyugg
(2/2 : JIoAı0800H)
(BARP UOA AOIs])
(pbwayg =)
vıprwung 'n BARp
L(g—-g)# —g/9 :1oyugr]
(nBuuyg =)
umuuy
-[eyuoz 'n puejmip] “wriosswuoL-N Stq
Sg 1sdumasp- MS 'n uwuuna SIq uoRwmy
(Bsounio,f 11op g/O :aodnoıayy)
(nydoy) =)
BSOULIO HT
L(e)p/? :aoeer]
(pydoy) =)
N oF 814 S [osurqgeHl
OUOSLÄREIN !Rurgpopuf “ururep ‘(wurgy)
ISsduras]- MS uruuma SIg O UBIPUT UOA
29. Ordnung
L(@)P—g/o :aoyugr]
(pbunyang =)
puepetL-N 9Mos Burıng]-[eayuoz
"n -N $Iq (uorpuf-N) ysopeag au
(8-2)
HUOZITONAT) UOLAON ! sıywıbfidoond
pn 1a 8270! 1
(nbunyangg =)
(OUOZUHNDOLL) UO]AH,) !sıDpnsur
ne g/o]
EN =)
(elepewıpp yyoru) uorpuf
642
Hr'g
0/ ‘0
/06 4
Omi
/06 9
0/ 8
Yolh q
97
&g
rE
go r’0
280°0
L80'0
2800
r10°0
0070
g80°0
(260°0)
(
980
fra)
rG
080
020
220)
981
091
#61
Tl
s'Ll
16%
‘
60%
39%
97
9'87
(uamuva) GIEX ‘6%
:(uIONAYON) 3980 = 808 X L'8Z
Auın) SNINLIDIOAID SNIIOJUONOY SNANLKIUT %
(8ST 'S ‘1961 AUHMAADOOH N SUHM
-AUATTICH 99% 8 6667 TUHMUNDOOH)
3 98°0—08°0 = 36T —F‘LI X 8'893 —g'E7
(L) ofrwaı wofrıuaa SNANLIUT FR
[('J[09 aojJowyag) LOIPMUOTOS "MON
"SOLL, "A SUOAYOET “UIID "SH KUIoyayoN
:$PE'S 'EE6T Yayvg "sam ‘zug 'ıvO]
3 87°0—08°0 = 8°08-6L1 X ELSE
(uoSöpoH) 82.1380.017907 4ofawad SMANAUT STIL
(1867 "oriq
ONAIHMELTL, '8E61 Be X VNIHSYNVA)
3 98°0—92°0 = 008-861 X 095 —0'97
(or Ba SNIUD SMAMLIUT L
(197PMUoyaS
“MONSOLL "A “UIIOgL "SM "UIOYAUON !9EE
npgE'S E86 ATNVE SAW "LIU "LVO)
3 610-310 = FLT-0'91X 075 — 61
"A SNOuoD SNOUD SMANAUT FE]
(1O7PMUoYaS
‘suoayagg :UIoyıyoN :ZO6T NOSIUMUYH
STE S ‘SE6T Yauvg °'SA "LIug] "LVO)
980-530 = 308 0'871 X 965-077
(uOSSPOH) Sunpauun sn.ındauT OJI
(1999PMUOYOS “UIoyayoN
:G£$ "Ss ‘SE61 a! Saw "“LIug LVO)
3 830—-971'0 = 681 —-T'91 X #95 —9'81
a saıpmıblidoona] [In
‚(odaryg) SWUIDMSUN| SUISON.LDI SMANAUT O8
(19999 M
-UOUOS UIONIYUON *788 "8 "EE6T NaUvg)
(gony8 T) 3 17°%0 = 161-391 X 9'07— 161
(""T) sU9S0]N.1009 SUDISINLODD SNANAUT OF
643
Passeriformes: Dieruridae
Le =2)# 8/2]
(euryg) yodoyy-N Sıq N eurypopuf-N
"n ueuung-M “eWwang-N 283445041Q9.4q9
mıgyo =)
gunpopuf-g 'n ueuuna-M Sıq
(dyoMuoyog
“MONSOLT, 'A Danqwer "Sn “urpzogg "sw
“UIONLYUON !SEE'S ‘gE6T UTUVT :1I2 'S
‘9861 THDnOoL VT *'sam "wug LVO)
3 870-120 = 8'377 8'61 X 4 FE-0'57
("geH) sa50.MaB4g
9I09URArIL 'n qeyospuwg .5n204uU9740Y ce) 00T 0 180 31% 26% "n ("T) SnoJuaN0y SnIOJUWaN0y SNAMAUT
(njegeuryp wOA A910) (0961 TIIH-NOsard °6887 SIqL ‘avaH
(mayd =) -SLIHM 9 HAUVHS) 9°77—0'08 X 068-917
O9UIOT-N — — _ 60% G'8Z (odıeyg) SIsuaauLog SnIoJUaN0Y SMAMADUT
RT) (87T 'S
eg 'n epıuog ‘967 AUAMUTHOOH 9 SUANTUIATIAH)
esnN ‘ujpsuf puosne, 'n -uwoduryy ‘ıes 3 TE‘0 = 908-003 X 008-282
-9gT OqWOJOS ‘uoABp N UfOSUT 'n BARF-Q %6F 1600 18°0 6:0z 8'87 (ueunopaoA‘) Wyourgual snyoguaNoy SnAmAouT
(esseyeurp] UOA A917) (MoNSOLL "A ‘uIoyayoN Uadunjwueg)
(my =) 3 680-180 = 9138 - I'IEX FE 9'173
UOYPTIBULILAYUIRN 94STouı "n SOY9]ON ne) 00T 0 ran) nz 9°08 HepfeM Sdoona] SN7704u0740Y SMANAUT
(91,67 "pL1q ‘SuruauaaTIaH
(s9ao] T g/2 2) :,967 JNAMUIHOOH 9 SUHMTUIATIAH)-
(uppsuf epung 3 780-380 = L‘08—- 0'083 X 008 —-9'87
ua) Idedunundg 'n aopy SsIq JoqworT H6F 7600 Fed 1:07 008 HLITEM S?SUADWrg SNII07W70Y SNANAOUT
(125449 MuoYaSI
“MONYSOL]L "A “UIONIYON “ulfIogg "Sn
:PEL 'S ‘EE6T SEAN °'Samı "Lug LVO)
(mad =) 3 870-880 = 133-013 X 9TE-E'L7
MOOM [OsuT 'n uorTuuegrag noN eh LOT‘O 0F°0 GTZ 9°67 "OS SNIINISOUAD] SNAI01U2II0Y SNANAIUT
(su91yog “MONSOLL, "A uUIoyıyaN
(mad =) SAW ‘Liu "LVO :G8 'S ‘TO6T TIaTanvy)
BLIOIOTA 3 970-180 = 135-061 X EEE 997
sg S Suomergsny puejuogeny-Q Un -N sg Zu) LE°0 L'0g 865 "PII SRIW91ID4Q SNII94U919Y SAANAIUT
[uıoyayoN ‘(307]
[(ayug,p) uossnsaof -wgex] douneag) Asıy SDurız, "sup ©’sam
"n (esumanoN) S1ogjogyeg WOA aoı] ‘LIU "LVO :][009 JOOW ‘(968T) zaszuvg]
jpdıyoay opeismmorf 'n -xNeogswooayurf,p 3 870-080 = 0'875 8'61 X 678 —-0'87
“ujosu] nıy “uposuLmwqyoeN Mur Boumsno N un LS OTTO 170 Balz 0'08 -deg SNAIMUOQLOI SNIIOJUANOY SNANLIUT
Sy pP 5 d V
41*
29. Ordnung
644
UDURUPPUY
L(me/o]
(snn.maassuT =)
(0861
“TITO 'S 'LL DO 'ISIH "eN Arqwog 'f
“ASLCUIHMAN 9 VHVYS 'n EE6I AUNVE)
snunsoydor
Jıy ospe wor) pun (YPTIESYYPNO FT) UOLÄOY
(e/P :yeM)
(snMmauassUT =)
(OPIIIFUHNIOLL) UOLAOY
Lin)e/? :aoeg]
(wessy g/T ‘7/T :1odneıy)
(smanwassıT =)
umuuy-N SIq uruuna wunme|
-N "wessy SIG AIWUOSBN] UOA UEIPUT-N
(g/? :aoyeg]) uwuuy-Jeayuaz
sig purwyp-N BPgqn wwang-g 'n
-[eayusz “uarpuf-[eayusz Isısuauoobumd
("yyerf snanwgnppwu = !snimwassuT =)
BUTDOPUT-S SIq OQ WLIOSSTUOTL,
UOA "N SUHIPUT OYFLYpng uoA !snasıpn.und
(8/9 :JomMao800H)
(snunwassuT =)
ALP
(eıguwung ‘tag UOAIH) (smunwassug =)
ujosurıewqyou N
yw wıeung ‘psurge Pydsıkepe-s
[e—2/> :oyeg]]
(sSapronwassıT —)
UHURBWBPUY
09
eo
—_
G
E=>
—
.
I>
L60°0 ro
9800 ra)
ra a0) co
LOL’O aa)
(IXO\L Pypıs)
8600 LEO
Sn
166
812
997
Y
08
y'sE
(SPE 'S 'SE6T Uavg)
L'34 = L'06 X 0°080'87
(puowydıy) Sns0rI0 snasıpnand sn.umAoaUuT
(u1oy
-IyoN Sunpuwweg ‘rg 'S 'gEg6I yauvg)
3 98°0—08°0 = 0'375 0'038 X E08 —6°%7
"A smunsoydor snasıpn.amd snundou]
(ea ypru [Io wnz ‘GE 'S ‘E86 Taıvg)
0'337 —- L’6T X 8'LS—9°77
YLINVA Be uophad sn asıpn.nd SNANLIUCT
(1861 "YPLIq “ONAIH
"UL "P ydwu dor G ERE'S ‘EE6T vg)
3 980 08°0 = 9'78 E61 X EEE 0'97
(PIMOH9) sıpun«4b snosıpn.ınd sn.umdauT
(199PMUOYaS ‘su9ayogl
!UIONIYON :OPFE N CHE 'S ‘gg6T aumuvg)
3 99°0—08°0 = 9778/61 X 9'378 -9°75
("PI9) sasuauoohumd
n (T) snasıpnand snasıpn.ınd sn.umdauT
(687 'S ‘96T AUAMUAHOOH X Suaı
-HUATTIaH :29% 8 '6F6I JUAMUNDOOH)
3 880080 = 018 9°61 X 0°68 —8°87
("qup) snsouof snosıpnand snundau
(uoprof wnosn)
"A snungoyd snosıpnınd snım dan
(6EE °S ‘EE6T aaıvg)
PET -SLIXTLS—0'33
uvarog
SISUIUDWDPUD SISUIUDWPPUD SRANLIUT 05
Passeriformes: Callaeidae 645
Familie Callaeidae, Neuseeland-Lappenvögel
Benennung nach Amapox (in PETERS 15, 1962, S. 157— 159)
Callaeas cinerea wilsoni (= Glaucopis). Wie die Nominatform. Nach FarrA u.a.
(1966, S. 237) liegen die 3, seltener 2 Eier in einem massiven Astgabelnest aus Zweigen
mit Moospolster; sie sind blaß bräunlichgrau und tragen braune und purpurfarbene
Flecke und Flatschen, die OLIveEr (1955, S. 520) purpurgrau nennt. Oval (k = 1,34).
Callaeas cinerea cinerea (= Glaucopis). Nach der Abbildung im Car. Brır. Mvs. (1912,
Taf. XXIJI, Fig. 2) und nach eigener Messung im Britischen Museum 1934 ist die Gestalt
länglichoval (k = 1,48), und an einem Ende kräftig verjüngt, aber nicht zugespitzt. Die
‚nur wenig glänzenden Eier klingen an die von Strepera an, haben jedoch den Grund
mehr warm steingrau und gelegentlich zart rosa getönt. Die zum Teil etwas ver-
waschenen, meist nicht sehr dunklen, größeren und kleineren, oft rundlichen Flecke
stehen lose, weit auseinander, und sind vorherrschend mitteldunkel rosa- oder purpur-
grau neben wenigen hell olivbraunen in ziemlich gleichmäßiger, lockerer Verteilung.
. Diese Färbung ist sehr eigenartig und erinnert an die nur dunklere bei C’readion. Wie
dieser früher zu den Glanzstaren, Eulabetidae (heute Teil der Sturnidae), gestellt war,
ordneten manche Systematiker auch Callaeas dort ein. Oologisch gehören diese beiden
Gattungen aber in die Nähe von Strepera (Cracticidae), die weniger umstritten nahe den
Corvidae steht. Für den, der nicht der Eifärbung jegliche Bedeutung für die Systematik
abspricht, erscheint dann von Belang, daß auch bei Kräheneiern gelegentlich solche von
rosagrauem Gesamteindruck vorkommen, wie eines von Corvus corone corone im CAT.
Brır. Mus. (Bd. V, 1912, Taf. XXI, Fig. 8) abgebildet ist, das für den Oologen nahezu
dem von Sirepera graculina graculina auf Taf. XXII, Fig. 9, trotz anderer Flecken-
sestalt gleicht. Diese ist ja bei so vielen Arten bedeutenden Schwankungen unterworfen.
Im Reichsmuseum Leiden gibt es einzelne so graugrundige Eier auch von Corvus
corone corone und ©. frugilegus. Überdies finden sich bei manchen Paradisaeidae, die den
Rabenvögel (Corvidae) nahestehen, Anklänge an die in Rede stehenden Eier, nämlich
bei Manucodia und Lycocorax.
Creadion carunculatus rufusater. Nach OLIVER (1955, S. 513) sehr blaß braun, überall
braun und blaß braun geflatscht, mit einer Häufung am stumpfen Ende.
Creadion carunculatus carunculatus (= Philesturnus). Glanzlose Eier mit hellem [nach
FArLLA u.a. (1966, S. 235) blaßgrauem oder weißem] Grund, auf dem, besonders am
stumpfen Ende, aber auch sonst, reichlich hell und dunkler purpurgraue Flecke und
Blattern neben hell- bis dunkelbraunen, nach FALtA u. a.ähnlich blaß purpurfarbene
neben rötlichbraunen, stehen. Zeichnungscharakter etwa wie Pyrrhocorax und Lanius
excubitor. Grundfärbung bei den von mir gemessenen vier Eiern im Museum Tring
trüb steingrau, im Britischen Museum hellgrau mit Rosa-Hauch, bei Nehrkorn rötlich-
grau. OLIVER (1955, S.515) sagt blaßgrau. Nach Hurrox (Ibis 1870, S. 393) weiß mit bräun-
lichgrauen und violetten Flecken am stumpfen Ende (29,3 x 22,8 mm, bei OLIVER mit 29,2
x 22,9 mm angeführt). Zweifelhaft erscheint REISCHEKS Angabe: Weiß mit braunen
- Tupfen (27,8x 18,9 mm, Wien 1886). Sicher falsch sind die beiden Beschreibungen
bei FInsc#H (Journ. f. Orn. 20, S. 168, 1872, nach HuTron, ]. e.: Bläulichweiß usw.) und
BuLLEr (1, 1888, S. 20): Weiß, purpurbraun gefleckt (35,6 x 25,4 mm). Die beiden im
Wiener Museum Creadion zugeschriebenen Stücke gehören zu Prosthemadera. — k = 1,38.
Heteralocha acutirostris (= Neomorpha). Das nicht sicher bestimmte Ei im Dominion
Museum, Neuseeland, ist blaß bräunlichgrau mit braunen und trüb purpurnen (nach
OLıvEr 1955, S. 517, runden) Flecken und Flatschen (Farra u. a., 1966, S. 236).
646 29. Ordnung
Familie Grallinidae, Australien-Schlammnestkrähen
Benennung und Anordnung nach MAYR (in PETERS 15, 1962, S. 159— 160)
Nach ihren Eiern kann man die drei durch Erbauen von Schlamm enthaltenden
Nestern, die auf waagerechten Ästen oder auf einer Astgabel stehen, und durch andere
Merkmale zusammengehörigen Gattungen dieser Familie nicht zusammenlegen, wie aus
der Einzelbeschreibung hervorgeht, wenn auch der Grund der Eischale immer hell und
rahmfarben bis rosa oder hellbräunlich getönt ist und die Fleckung immer hervortritt.
Die Gattung Grallina als Angehörige einer besonderen Unterfamilie Grallininae scheint
wegen der Kleinfleckigkeit und der Eierform von den beiden grobfleckigen Corcoracinae
mehr abzuweichen als diese voneinander, was der früheren Unterbringung in zwei
verschiedenen Familien, den Prionopidae (NEHRKORN 1910, S. 253) für Grallina ent-
spricht, den Corvidae (NEHRKORN 1910, S. 364) für die beiden anderen Gattungen;
dorthin passen sie oologisch aber auch nicht.
Briefliche Gewichtsangaben von W. LonGMoRE (1980) aus dem Australian Museum
in Sydney erlauben Angaben über das Relative Eigewicht RG für alle drei behandelten
Arten: Weibchengewichte von 375,6, 116,4 bzw. 79,9 g ergeben bei Corcorax, Struthidea
bzw. Grallina ein RG von 4,5, 6,0 bzw. 7,6%.
Grallina ceyanoleuca. Vorwiegend breite, birnförmige Gestalt, wie wenn ein para-
bolischer Kegel an eine Halbkugel gefügt wird, nur gelegentlich länglicher (k = 1,38).
Auf dem rahmweißen bis rosa gehauchten, seltener hellbräunlichen Grund liegt im oberen
Drittel ein Kranz dichter Punkte und vorwiegend kleiner bis mittelgroßer Flecke un-
regelmäßiger Form. Mehr rundliche stehen isoliert, zerrissene fließen teilweise zusammen.
Ihre Farbe kann sein hellrot, rotbraun, purpurbraun, oft zugleich in einem hellen und
einem dunkleren Ton. Dazwischen lilagraue Unterflecke in geringerer Zahl, die teils
blaß-, teils schiefergrau sind, meist aber nicht sehr auffallen. Am spitzen Teil nur wenige
feine Punkte. Die Lupe läßt ein zartes, nicht ganz glattes Korn mit deutlichen Poren
auf der rahmfarben bis quittengelb durchscheinenden, glänzenden Schale erkennen.
Gleichmäßiger geblatterte Stücke sind selten. Es sind gut charakterisierte Eier, an
welche nur die von Vanga entfernt anklingen. (Taf. 12, Fig. 1.)
Corcorax melanorhamphos. Scheckige, ausschließlich für diese Art charakteristische
und kaum abändernde Eier von gewöhnlicher, mäßig verjüngter Gestalt (k = 1,36).
Auf warm rahmfarbenem Grund heben sich scharf markierte, kühne rundliche Blattern
auffallend ab, die weit von einander einzeln stehen, aber da und dort zu zwei oder mehr
verbunden sind und immer den allergrößten Teil der Oberfläche zwischen sich frei
lassen. Neben den teils hell-, teils sehr dunkel-olivbraunen Oberflecken sind auch die
bleigrauen, ziemlich großen Unterflecke recht deutlich sichtbar. Ursache des ganz
eigenartigen Eindrucks dieser Eier ist einmal der scharfe Kontrast zwischen dem hellen
Grund und den nicht zahlreichen, aber dunklen, immer großen Klecksen von meist
4mm Durchmesser, dann das fast vollständige Fehlen kleiner Flecke und Punkte
zwischen jenen, schließlich die häufige Überlagerung von Ober- und Unterflecken in
mehreren hellen und dunklen Tönen zugleich, wobei aus den an sich rundlichen Flecken
da und dort solche von unregelmäßiger Gestalt und besonders dunkler Farbe werden.
Auch fast nur grau geblatterte Stücke kommen vor, bei denen also die Pigmentablage-
rung schon vor Abschluß der Kalkschalenbildung aufhörte. Trotz nicht geringen
Glanzes ist die Oberfläche ziemlich grobkörnig, weist zuweilen Längsrillen auf und läßt
unter der Lupe zahlreiche grobe Poren erkennen. Die Farbe im durchfallenden Licht
ist ganz wie die äußere. Vergleichbare Eier gibt es kaum, auch mit denen von Pyrrho-
corax und Strepera haben sie nicht die geringste Ähnlichkeit, sind eben ein Typ für sich.
Passeriformes: Grallinidae 647
Die sehr gesellige Art brütet in Familiengemeinschaften von etwa 6—8 Vögeln, die ein
einziges Nest errichten. (Taf. 12, Fig. 2.)
Struthidea cinerea. In ihrer früheren Stellung bei den Corvidae fiel diese Art ganz aus
dem Rahmen. Das Ei erinnert an das von Oriolus oriolus, ist aber weniger glänzend,
breiter oval (k = 1,36), oft stärker zugespitzt und meist spärlicher gezeichnet. Die
milchweiße Schale weist häufig erhabene, zarte Querwellen auf und erscheint unter der
Lupe ein wenig grob gekörnt. Manchmal besteht die Zeichnung nur in vereinzelten
schwarzen Punkten, bei anderen kommen tief sepiabraune, abgerundete und leicht ver-
wischte Flecke hinzu, da und dort auch bleigraue, oft bloß auf der halbkugeligen Hälfte
und fast immer nur so wenige, daß sie sich leicht zählen lassen. Durchscheinende Farbe
gelblichweiß. Ganz frische Eier sollen einen schwach bläulichen Schimmer im Weiß
besitzen, der offenbar schnell völlig ausblaßt und auch in der Innenfarbe keine Spur
hinterläßt. Pinselwischer-artige Flecke, wie sie CamPpgBELı (1901, S. 63) erwähnt, er-
wiesen sich mir als schon ursprünglich in dieser Gestalt aufgelagerte Oberflecke, nicht
wie bei unserem Pirol (Oriolus oriolus) zuweilen und auch sonst oft erst später entstanden
durch Auflösung des Pigments im Uterusschleim. (Taf. 12, Fig. 3.)
(5 I spe ayow
UoA uopgwZ 9ADyoy '8—G/d :AYu9Aıog)
(purjsuoond) p/> :aoanoıy)
(1867 "PLaq ‘OnATmum], yoru p !aoyyom
-uoyoS "MONSOLL, "A "Urplogg "SO BULL,
SOW WIONIUON GE] 'S 016] SUnvp
E09 8 "7167 "Saw wm uvd :89'S
"061 TIAaanv,) :88] 'S 688] HLMON)
3 090880 = 6'355 —0'61 X 3'3E—-2'92
BLIOJOTA FIq S UONLIJEnY-S N -O YL'9 09 ra EN) yrV GIG E67 PINOoH Pau Dopıymas 09
(Plug 'ONATHMT,
yorUu ° : MONSOLL, "A "UIOTTOS ur) "UION
on Yanzyurag "Banque “urjiogg "DUuLuf,
[(& 7 SW ayou uoA NN *208 8 "ZI61 "SAW "LINE LVO 99 'S
uojywzZ Daoyoy '6—T) C—-P/D :Ayuoaaoy | 106] TIUaaNv,) :68] °S '688T HLMON)
(purjsusond) p/o :10dnoayy) 3 9P°7—£0'1 &E IE 198 X TER -9°9E
(eunpay) 4 -M) UATTRAIISENV-S "NO UL 69] 9610 08] 8'8z 6 (A) soydıumyıouppou TDAOUO) CL
(1867 'JPLIq ‘ONnAIHUAL yaru g iger‘
0L67 SUNVf »:PL6T SW "U 907 'S "2961
&0 L(e—z)#/o] ALNSHAUIS 895 'S 'C06 1 'P SA "LIU "LV))
- (BLIoJorA g/P :198NOAN]) °21 'S "1061 TIATanV/) :6L 8 '688T HLMON)
e) (PIO Pad —) 8 670-380 = 8'737 F'61 X T'TE-277
: uoreagsny | %0'9 79 0770 | 980 8'027 9'87 (weyyvrf) ponojounko nunpan PL
° HRprumpean)
ER (U9A.109808
-SNE [UOM) PUur[posnoN UOA [OSUTPION (uSgBLIYOSOG AOypısun Hay Ouo) CPI) SRso«1 man DOW. ]]
Ke)z/o] (noy
JIEMOIS [PSUf I9g ujosu] ode yynos 'n -SOn], "A "SpA "PLag] "NOLLAH 199 I ol ‘019
purpposnoN UOA [HSUIPNS !SNDMOUN.mO N EIG 'S 'CGG6T AALATIO !SULLT, "SH Jorff P)
UOPUNMYDSIOA S[IOJUOYKTOAD "Ujosu ° #7070F70 = 0'8370'08 X 0'3E-8'87
uop N -I0TAN,) OIMOS KlOriiwgg OfyyrT N ("wn) snyppmoun.ımo
yroınd) "PUREOSNON "A [OSUIPAION open nd Nr‘ 9‘, 2010 ero 0'272 r’oE n ('88O]) open /n.ı snyummoun.«mo uorpwart) G]
(wınosny SOypostyrag] :009 'S 0E6T NHATIO)
(82/9 :19A1O) 3 96°0—68°0 = 0'83—8'LEX 0°5H—7'6€
JIBMOJS [OSU] 'n PurfoosnoN UOA [Esumpng 091 Se]‘o 26°0 9 (tu) DadaunD woa4aud SDOPIP)
(82/9 :19A110) (038 'S ‘0967 AAAIIO)
purpoosnoN UOA [OSUTPION ee] 19% 698 ("dey) uospun noaun SDOPPI £
YRPIOUL UT)
e öy 3) p 8 a | V
No)
Passeriformes: Artamidae 649
Familie Artamidae, Schwalbenstare
Die Eier dieser Familie, deren Arten und Unterarten hier nach Mayr (in PETERS
15, 1962, S. 160— 165) gegliedert und benannt sind, lassen sich, wie die ganz ähnlichen
unserer Würger (Lanius), in zwei deutlich getrennte Hauptfärbungsgruppen einteilen:
1. Sehr konstanter Färbungstyp, ähnlich dem von Lanius excubitor, ohne bunte
Farben. Auf trübweißlichem Grund annähernd gleichmäßig überall verteilte, ziemlich
dichte, etwas verwischte olivbraune Flecke mit einigen grauen Unterflecken dazwischen,
wie auch bei unseren Feldlerchen (Alauda arvensis). Glanz gering oder ganz fehlend.
Dieser Typ nur bei A. personatus und swperciliosus.
2. Stark variabler Färbungstyp, wie bei Lanius collurio, zum Teil auch in dessen
bunten Farben und in seinem Zeichnungscharakter, aber meist zarter und heller ge-
fleckt, jedoch manchmal mit dicht stehenden, groben, dunkleren Blattern, auch braun-
roten. Zeichnung hauptsächlich am stumpfen Ende, oft vorwiegend aus Punkten
bestehend. Mehr oder weniger glänzend. Abgesehen von personatus und superciliosus,
gehören zu diesem Typ alle Artamus-Arten.
Gestalt bei sämtlichen ein meist kräftig verjüngtes Oval, doch sind viele Stücke mehr
breitoval, besonders bei personatus, cinereus hypoleucus und minor. Korn fein und
glatt. Poren unauffällig. Durchscheinende Farbe weiß bis rahmgelb, auch mit grün-
lichem Hauch.
Nach Weibchengewichten bei RIPLEY & RABor (1958, S. 52), RAND & RaBor (Fieldiana
33, S. 345, 1960), GILLIARD & LecroYy (1966, S. 266), Auı & Rıprey (Bd. 5, 1972, S. 145,
nach PAYNTER) und LONGMORE (briefl. 1980) ergeben sich folgende Relative Ei-
gewichte:
Q-Gewicht Art RG Q-Gewicht Art RG
ing 20075 ing in 9%
43,3 Artamus 1. leucorhynchus 9,1 33,5 Artamus superciliosus 10,3
40,2 Artamus leucorh.leucopygialis 8,5 33,4 Artamus cinereus melanops 9,8
40,0 Artamus fuscus 8,9 30,0 Artamus c. cyanopterus 11,0
35,0 Artamus personatus 8,7 R
Artamus fuscus. Grundfarbe weiß, rahmfarben oder blaßbräunlich. Zeichnung stark
abändernd, teils gröber und dann etwas verwischt, teils schärfer umrandet und dann
dunkler und mehr punktförmig, auf der schlankeren Hälfte nur spärlich. Meist helle
Eier mit braunrötlichen, purpurbraunen, hell olivbraunen, gelblichrostfarbenen und
lilagrauen Flecken. Manchmal nur eine dieser Farben, so bei Stücken mit gelbbräunlicher
Wässerung oder Wölkung wie bei Erithacus rubecula, andere zwei- oder dreifarbig aus-
gesprochen gefleckt. Ringe, Kränze oder Kappen nicht selten. — k = 1,38.
Artamus leucorhynchus leucorhynchus. Auf Labuan (Borneo) sammelten Low und
Whitehead Eier von rahmfarbenem Grund, die schwach hellbraun und grau gesprenkelt
sind, besonders am stumpfen Ende, das in denselben Farben umkränzt ist. Manche
Punkte und Flecke sind hell purpurgrau. Wie bei den anderen Arten wechselt die
Intensität der Zeichnung. Solche Labuan-Stücke im Britischen Museum messen 24,0
x 17,7 (k= 1,35) und 26,7 x 17,3mm (k = 1,50). Das Maß von SmYrHıEs (1960,
S. 370), das sich wohl auf dieselben Eier stützt, 23x 18 mm, wurde nicht in die Liste
übernommen. — GıBson-HırL (1950, S. 114) beschreibt 1 Dreier- und ein Vierer-
gelege von N-Borneo als eiförmig mit glatter und sehr wenig glänzender Oberfläche.
650 29. Ordnung
Grund weiß mit einigen groben, blaß purpurgrauen und braunen Flatschen sowie
feineren umberbraunen Flecken. Meistens ist die Zeichnung um den = Pol
konzentriert. — k = 1,36.
Artamus leucorhynchus amydrus. Wie A. fuscus. Nach HELLEBREKERS (briefl. 1975)
(s. auch HELLEBREKERS & HOOGERWERF 1967, S. 89) ist ein Zweiergelege von Billiton
grünlichweiß mit hell bräunlichen Wolken besonders am stumpfen Ende (Museum
Leiden). — k = 1,36.
Artamus leucorhynchus humei. Auch diese Unterart variiert wie A. fuscus. — k = 1,36.
(Taf. 12, Fig. 4.)
Artamus leucorhynchus leucopygialis. Australische Eier und solche von NO-Neu-
guinea haben auf weißem oder rahmfarbenem Grund, der leicht rötlich bis bräunlich
getönt sein kann, zarte oder gröbere Flecke vorwiegend in losem Kranz am dicken Ende.
Ihre Farbe ist hellbraun, gelbbraun, kastanienbraun oder purpurbraun, neben lila bis
schiefergrauen Unterfleckchen. Die Tüpfel sind oft hell und wenig scharf umrandet,
manchmal mehr punktförmig, dann dunkler. Meist sehr schöne Eier, besonders im
frischen Zustand. — k = 1,38.
Artamus leucorhynchus melaleucus. Nach LAYArD (Ibis 18382, S.510f.) auf rahm-
weißem Grund am stumpfen Ende reichlich mit braunen und trüb purpurnen Sprenkeln
und Flecken bedeckt. Sie zeigen Neigung zur Kranzbildung und haben oft ein glanz-
loses, kalkiges Aussehen. — k = 1,42
Artamus leucorhynchus mentalis. Milchweißer Grund, manchmal rosig gehaucht.
Zwischen hellen rotbraunen und grauen Flecken heben sich dunklere scharf ab. Zuweilen
dominieren die grauvioletten Unterflecke, was an Tchagra-Eier (Laniidae) erinnert. —
k:=.1,38,
Artamus personatus. Ganz wie A. superciliosus-Eier (vom Lanius excubitor-Typ), nur
kleiner und noch breiter oval (k = 1,26).
Artamus swperciliosus. Zeichnung und Farben wie eingangs bei Typ 1 bereits an-
gegeben. Zuweilen ist der weißliche Grund graugrünlich oder bräunlich gehaucht. Die
dichten, umber- oder olivbraunen Blattern und Frickeln mit den spärlicher eingestreuten,
blaß schiefergrauen Unterflecken lassen wenig von der Grundfarbe frei. Ganz wie
A. personatus, nur größer. JAMES (1970, S. 135) sah auf grünlichweißem Grund grau-
braune Sprenkel und Streifenzeichnung bei purpurgrauen Unterflecken. — k = 1,34.
(Taf. 12, Fig. 5.)
Artamus cinereus melanops. Weiß bis rötlichweiß, kühn geblattert in umber- oder
kastanienbraunen und schiefergrauen Tönen. Die Flecke sind teils schärfer umrandet
und stehen dann weiter auseinander, teils ein wenig verwischt. Sie fließen dann oft
zusammen. Deutliche Unterflecke beleben das bunte Bild. Ein Dreiergelege in meiner
Sammlung zeigt besonders prächtige Farben, eine Mischung von hellen und dunkleren,
leuchtend fuchsig rotbraunen mit auch lilagrauen Blattern und Flecken, großen und
kleinen, die viel vom rahmgelben, glänzenden Grund freilassen, nur am stumpfen Ende
sehr dicht stehen und dort teilweise sich überdecken oder zusammenfließen. — Ein
anderer Typ: Weißlicher, zart rosa oder lachsfarben getönter Grund. Mehr oder weniger
gleichmäßig verteilte oder am dicken Ende dichtere Blattern, Frickel und Punkte von
trüb rötlichbrauner bis leuchtend roter Farbe, dazu blaugraue Unterflecke. — NEHR-
KORNS Beschreibung in seinem Katalog ‚‚wie swperciliosus‘‘ ist irrig. Seine richtigen
Stücke, von Le Sou&f gesammelt, erscheinen wie leuchtend rot und grau gefleckte von
Lanius collurio. — k = 1,34.
Passeriformes: Artamidae \ 651
Artamus cinereus hypoleucus. Trübweiß bis rahmgelb mit meist unregelmäßig ge-
formten Flecken, oft auch kühnen Blattern von nußbrauner oder rötlichbrauner Farbe,
srößeren und kleineren, nicht immer nur am oberen Ende. Stehen sie aber dort gehäuft,
dann bleibt das spitze Ende meist fleckenfrei. Unterflecke grau oder purpurgrau. Zwei
Stücke bei Nehrkorn sind grobflatschig gezeichnet, glänzender als andere, und erinnern
in den Farben an Colluricincla. Ein weiteres hat graue Flecke am stumpfen, schwarz-
braune am spitzen Ende. Die Exemplare des Britischen Museums sind wie die von
melanops, aber die Abbildung ist etwas ungewöhnlich wegen ihrer gleichmäßigen
Mischung und ebensolcher Verteilung der fast gleichgroßen lilagrauen und braunen
Fleckchen (Bd. 4, 1905, Taf. XI, Fig. 16). — k = 1,29.
Artamus cyanopterus cyanopterus und perthi. Stark variant, aber charakterisiert durch
das Überwiegen sehr dunkler Punkte und Fleckchen, eher an Lanius nubicus als an
L. collurio erinnernd. Zeichnung vorherrschend in Kranzform am stumpfen Ende.
Grundfarbe weißlich, grau oder gelblich getönt. Fleckenfarbe umber, olivbraun bis fast
schwarz neben grauen Unterflecken. Weniger oft blaß olivbrauner Grund oder rein-
weißer mit großen, unregelmäßig geformten Blattern in rötlich- bis schwarzbraunen
Tönen, wobei die sonst auffallenden schwarzen Punkte fehlen können. — k = 1,33.
Artamus minor. Meist helle Eier, etwa wie bei A. fuscus. Rahmweiß oder gelblich
sehaucht, hellbraune und graue Wischflecke und Punkte, nicht immer oben verdichtet.
— k= 1,31.
. Ordnung
29
652
Ujosu] TUOSPI 0600
uBLULOPOLT) MON oF'E
(r ) :AYUDAAOS)
|(dusju A) orspboana] : NMONUHAN 194]
Anaımp wnz sıg purju]
“yongg Ss mwyg sıq M (soprapnsnoN)
gnpp-Suruurp SIq O OYSnSy um "uorwuays
-NY-N WoumanoNn "Uossnddo,] “ujosu]
unnded- y uppsuf nay 'n tes "uoysnfoW Hs8'g ere 9800
(g/? :aoyegg)
(uouwumpuy Z/T :1P8noAy])
UDSUT HO907) "UDURLWBPUV 9n9'0 OF'E 2800
I(p)e—- z/p :Jaomaodooy |
|(duopmA) +o7sPboona] :NMONUHAN 1949|
te] DBARP
"UNODURNT FUONJIEL Uyoung Wagywung N8'g 6F'E 2800
(E—2/» :uossLLump)
(oHULOE-N UOA AOTS])
uposuf wunyen 'n ujosun
-IRAQUORN "[pıou Yun o9U1oEL “ujosu]
nıng 'n -uraRpRg "[ypsum uourddipydg or
L(P—)g/> :aosegg]
uwwunmp BUury)- MS Ppurpimipf,
BULMEL (AYSO B[LIIS UOA) uorpuf 'n uo]Aoy) 959'9 age F80'0
9) p
020
610
co
080
ELl
59]
OL]
08]
GG
©
‘ez
EL €)
[urpaogg "sn unoyayon !(Bang
-wwp 80) OPT '’S TE6T NNVWUSINITLT, |
3 E20 180 = B°LI-0'LIX 990767
Hurpanp soypguau snyouhyıoonao] snumpıy L
(auvav’f yowu)
(19]5%8 AA) FNOnaDpoue SnyPauhr1oond] smuumyıy —
(uraogg ng "UdoyayoN !PL6]
SIN ALNMAUUS IGET 'S OL6] SanvP !T9P'S
‘7061 Taaaanv) ‘ER 'S '688] HINON)
Q amt ‘ ‘ nr ‘ ‘
8 0E0-81T0 = SLITLITXSIETI TG
pnon sıpmnbfidoona] snyaulin«oona] Snap TE
(1867 "JPLIq ONAIHMAT, 'L
Yoru zZ F1OYJOMUOLTOS FITE "S 'EEGT ALNVEL)
3 13°0—-81°0 = 081 FIT X L’FG-E'77
UURWOSOLIS 2Dıny sSnyaufyıoona] smaunyıy Pr
(MONSOLT, "A "UIONAUON “UrLIog]
"SD 688 °2967] AUTMUADOOH N Sum
-SDTISCH !EOT —ZST 'S '6H6T NUTAULDOOH)
2 8507810 = 881-191 X6 95-9 1%
IOSTOLIOIO SNupfhum snyauhryıoono] SNUpıy 66
(872 8 ‘0067 "SA "IugL "LVO
Seep U '688T FIAT "AVAHERLIH AA N HAMVES)
GST-LLIXL9STI9'E8
("T) snypukyıoona] snyauliy.ıoona] smwunyty 9
(19YPMUOYJOS *urfaogg "SUN
SSTE 'S- gegT aauvg ©'sapy "wıagg "LYO)
© 807870 = 18T 72'971 X 0'930 1%
. "A smosnf snumpıy 9
Artamidae
Passeriformes
(8/2 :Ayu9Aaog)
[19999 nuoyaS
“uıoyayon “Pr6T NPlıq “uspoT 'EnM)
SUTNAUITTIEH "SAN "TIag "LVO :PLR'S
‘I067 Taagany) °17°8 '6887 HINoN]
3 870-070 = 0'ST-0/ETX E07 —-0'LI
uoreagsny-[elu9zZ mn -N %0'9 861 g10°0 I ) cHhI 9'87 y0]]I9TA LouVvw Smwply Tg
(MONSOLT, 'A ‘SU9AIyagT “uıogg
"SA “UIOoYayoN "SAN "TIag "Lvg :TLp'S
(78/2 :AyuoAaog) ‘067 TIadanyg :7#'S 688] HIHON)
[(weygerp) snpıp4os =] 3 770-910 = 08T - 19T X E77 8'037
uoeagsny- MS vyad (ygen) vynad
uaruewse], 'n uoegsny-Q !5N47doupfd %8‘T 08€ 800 6To 6°91 ‘zZ n (‘ygeg) snusgdounhd snaodounfo smumıy Sp
LoumanoeN 3330-670 = EST -8'IT X FETT
-S -puejsusand)-S uoA N “uoergsnV-ON H8'T ge’g 8800 0,0 21 12% adıeyg snonajodkiy SNILUN SMUMIY GT
(uroyayoN *F16I SM 'n IIF 'S
196] ALNHAYAS !'sam "LIE "LVO :TLR'S
(7—g/2 :AyusAaas) ‘I06I Tıaaanv) ‘87 'S °688T HLUON)
("A Sna4aund :910.119 470) 3180-970 = (48T) S’LI- LEST X 997 -0°07
(ON Asgjne) uareagsny Sodouuf eG) SzE 7800 6T‘0 291 AZ "p[9 sdouppw sna4oun smumıy 79
(1861
"polig ‘ONAIHYAL Ypeu Z :19999Muoyas
“ULLI "SON MONSOLL "A "UIoNayoN :0TF 'S
(g— 2/0 :AyuoAaag) ‘96T ALNAAUAS ‘'sam 'LIIg "LVO :Egp 'S
(erIogaLA Z/T :1O9n9ı 1) ‘067 TIaaanvg ‘LG'S ‘688T HINON)
Suraegg] wnz sıq 3080-870 = 88T -8'9T X 677 —-8°07
M "puepsusond-OS SIq N uoeasny-OQS %3E ar'g 810°0 sro 0921 877 (PIO) ae 89
19949M
-UOYIS UTLIOEL "SON "MONSOLL, "A "UIOYIUON
:FL6T SIN On SOF 'S ‘L96T ALNHAUAS !GET 'S
‘OL6T SEnvp “sam "ug Ev) :997 8
‘I061 Tıaaanyg) :FF°'S °688T HLAON)
(ge 2/2 :AyuoAıog) 3 670-110 = T'SI -8'E1 X 8'377 Fol
ONPA-MS TOgne uorergsny %6°T co'E 180°0 8To 8‘91 21z (pno9) sninuos4ad snwumyıy LE
Sy 19) pP 3 a V
654 29. Ordnung
Familie Cracticidae, Flötenwürger und Würgerkrähen
Benennung und Reihenfolge nach Amavox (in PETERS 15, 1962, S. 166— 172.)
Von den drei Gattungen dieser Familie waren bei NEHRKORN (1910, S. 255—256
und 364) Oracticus und Gymnorhina als Flötenwürger unter den Laniidae, Strepera
aber in einer eigenen Familie a ie Streperidae, hinter den Corvidae am
Ende des Systems untergebracht.
Oologisch zeigt Cracticus hellbraunen Grund der Schale mit braunen bis grauen
Flecken (etwa vom Sphecotheres-Typ der Oriolidae) fast nur am stumpfen Ende, aber
auch grünlichen und dunkelbraunen Grund. Manche erinnern an gewisse Corvidae,
Rallidae und Otididae, wie aus der speziellen Beschreibung hervorgeht.
Gymnorhina: Grünlicher oder bräunlichroter, wenig variabler Grund mit sehr varia-
bler, olivbraungrüner bis schwärzlichgraubrauner Zeichnung. Eigener Typ, selten
ganz wie Corvus.
Strepera: Abgesehen von der Färbung, sehr ähnlich Corvus-Eiern.
Die Oologie stützt also die Anordnung dieser Vögel in der Nähe der Corvidae und
rückt Oracticus sowie Gymnorhina deutlich von den Laniidae fort. Die beiden ersten
Gattungen weisen keine gemeinsamen Merkmale gegenüber der dritten auf, so daß
die Einteilung in die Unterfamilien Cracticinae und Streperinae, die auch PETERS
nicht vornimmt, oologisch nicht gestützt wird.
Nach RırrEry (1964, S. 45), GILLIARD & LecroY (1966, S. 269), Driamoxp (1972,
S. 300—301) und besonders nach brieflichen Mitteilungen von den Etiketten und
Notizen des Australian Museum (LONGMORE) sind eine Reihe von Weibchengewichten
bekannt, die zur Aufstellung folgender Liste der Relativen Eigewichte führten:
Q-Gewicht Art RG Q-Gewicht Art RG
ing in‘, [ing in %
324,0 Strepera versicolor melanoptera 5,8 | 145,0 Cracticus c. cassicus 7.3
296,9 Gymnorhina t. tibicen 5,0 | 125,3 Cracticus n. nigrogularis 7,8
269,7 Strepera g. graculina 6,8 80,6 Cracticus t. torquatus 9,7
151,2 Cracticus q. quoyi 7,6
Cracticus. Ähnlich wie bei Coracina (Campephagidae) kommen als Grundfarbe
grünliche, graugrüne, hell- und dunkelbraune Töne vor, zum Teil bei derselben Art
all diese. Die vorwiegend nicht sehr dichte und meist nur mittelgrobe Zeichnung be-
schränkt sich in der Regel auf den breiteren Teil der kurz- bis normalovalen Eier
und besteht in hell- und dunkelbraunen Fleckchen, zwischen denen sich meist nur
punktförmige graue Unterfleckchen kaum bemerkbar machen. Die Innenfarbe ent-
spricht der äußeren, ist also gelblich bei den braunen, grün bei den grünen Stücken.
Das zarte Korn und die unauffälligen Poren bieten nichts Besonderes, der Schalenglanz
ist mäßig, nur gelegentlich stärker. Vorzuwiegen scheinen Eier mit hellbraunem Grund,
die zum Teil im Gesamteindruck an Sphecotheres (Oriolidae) und an dunkelgrundige
von Ürex crex anklingen. Ändere, besonders die grünen Typen, weichen davon aber
vollkommen ab.
Cracticus mentalis mentalis und kempi. CayL£y (1933, S. 51) beschreibt (wohl austra-
lische) Eier dieser vielleicht garnicht rassisch gegliederten Art als auf blaß grünlich-
grauem oder blaßbraunem Grund rotbraun, purpurbraun und schiefergrau geblattert,
gibt aber keine Maße. Nach Ranp (Bull. Amer. Mus. Nat. Hist. 79, S. 347f., 1942)
Passeriformes: Cracticidae 655
blaß graubraun mit dunkel erdbraunen Flecken und Flatschen, die bei 2 von 3 Eiern
eines Geleges einen dichten Kranz um das stumpfe Ende bilden und sonst spärlich
sind. — k = 1,32. (Taf. 12, Fig. 6.)
Oracticus torquatus argenteus. Nach CAyLeyY (1933, S. 50) blaßgraugrün, besonders
am stumpfen Ende mit gebrannter Siena gefleckt. Maße gibt er nicht an. (Taf. 12,
Biest.)
Cracticus torquatus leucopterus. Nach CAMPBELL (1889, S. 303) ähnlich ©. t. torguatus
und (©. t. cinereus, nämlich in der Regel warmgrau oder hellbraun mit rotbraunen und
dunkel purpurbraunen Flecken und einzelnen schwarzgrauen Punkten, die zuweilen
am Pol zu einer Kappe zusammenfließen. Rundlich oder oval und glänzend. Die im
Britischen Museum sind breitoval, glänzen und tragen, an Orex-Eier erinnernd, auf
blaßgrüngrauem Grund kleine rotbraune, lilarote und blaß purpurbraune Blattern
und Wischer, im übrigen nur sparsame Punkte. Nehrkorns Exemplare gleichen teils
bräunlichen (©. £. torguatus, teils zieht die Grundfarbe ins Grünliche. Es sind zum Teil
recht helle Stücke, rostbraun und purpurgrau gefleckte, während andere mattbraune
bis fast schwarze Flecke zeigen, manchmal mit Ringbildung im oberen Eidrittel,
zuweilen gleichmäßiger verteilte Flecke. — k — 1,36.
Cracticus torquatus torquatus. Sehr variabel. Grundfarbe gewöhnlich graubraun
oder hellbraun, aber auch olivgrau, olivbraun, kaffeebraun, weniger oft graugrün.
Die meist nur mittelgroßen und kleineren Fleckchen, Spritzer und gelegentliche
Wischer am dickeren Ende sind vorwiegend rotbraun, aber auch tief purpurrot, umber-
braun, rostfarben. Unauffällige, kleine graue Unterflecke kommen vor, fehlen aber
nicht selten ganz. Helle Stücke erinnern an die freilich erheblich größeren von Crex,
die dunkleren an manche von Porphyriops, also von Rallen (Rallidae), wenngleich -
hier nur eine entfernte Ähnlichkeit besteht. Nach CamPBerı (1901) kann die Färbung
selbst innerhalb des Geleges verschieden sein. Innenfarbe teils grün, teils gelblich.
Glanz mäßig bis stark. Korn recht zart mit unauffälligen Poren. Gestalt mehr oder
weniger breitoval ohne scharfe Zuspitzung. — k = 1,34.
Cracticus torquatus cinereus. Nicht von torguatus verschieden. NoRTH (1889) erwähnt
neben hellrotbraunem Grund auch spargelgrünen mit rötlichbraunen und kastanien-
braunen Flecken. Hin und wieder einige schwarze Punkte, die sich feucht leicht ab-
waschen lassen, also nur lose obenauf haften. — k = 1,37.
Oracticus cassicus cassicus. Im Tring-Museum befinden sich von dieser in der Färbung
ungemein abändernden Unterart Stücke vom Sattelberg (NO-Neuguinea), die wie
zugespitzte kleine Eier von Otis tetrax erscheinen, also olivgrün bis olivbraun, teils
nahezu einfarbig und dann erheblich glänzend, teils verwaschen und nur leicht hell-
braun gewölkt oder gestreift. Zuweilen da und dort ein einzelner brauner Fleck. Ähnliche
Exemplare in Sammlung Behrens und in der meinen. Gleichfalls vom Sattelberg be-
sitzen aber Nehrkorn und ich durch Wahnes gesammelte Stücke von ganz anderer
Erscheinung, nämlich wie helle Eier der Saatkrähe (Corvus frugilegus), also auf blaß
graugrünlichem Grund mitteldunkle graubraune, verwischte Flecke tragend, kleine
und größere, diese besonders am oberen Ende, wie die vorigen Typen gelbgrün durch-
scheinend. Zum Überfluß hat Nehrkorn auch noch ein hellgraubräunliches Stück
von Aru mit blaß olivbraunen und wenigen grauen Fleckchen überall, jedoch dichter
am einen Ende, zitronengelb durchscheinend. Sogar blaue Tönung des blaß olivfarbenen
Grundes kommt nach RAnD & GILLIARD (1967, S. 454) vor, so daß man kaum glauben
möchte, daß all diese Eier derselben Art angehören. Die Otis tetrax-ähnlichen stimmen
übrigens fast genau mit Nehrkorns Ei von Pteropodocys mazima (Campephagidae)
überein. — k = 1,40.
656 29. Ordnung
Oracticus cassicus hercules. Von Meek auf Fergusson gesammelte Eier weisen geringen
Glanz und einige Ähnlichkeit mit grünlichen von Limosa auf, oder sie besitzen mehr
blaß- bis bräunlicholivfarbenen Grund mit matten, dunkelolivbraunen oder reiner
braunen Flecken neben einigen feinen schwarzbraunen Punkten, die zahlreicher am
stumpfen Ende stehen. So in Tring. — k = 1,38.
Crateicus nigrogularis picatus. Nach A. J. Campbell (1901) birnenförmig, glänzend,
hell olivbraun mit umber- und dunkelbraunen Blattern nebst schwarzgrauen Punkten
da und dort, also wie bei voriger Art, jedoch kleiner. Aber Nehrkorns Exemplar ist
graugrün bis hell olivgrün mit grauen und kupferbraunen, am stumpfen Ende dichteren,
markierten Flecken, ähnlich manchen ©. t. torguatus. — k = 1,36.
Oracticus nigrogularis kalgoorli. Nach SERVENTY (1967, S. 415) gewöhnlich dunkel-
olivbraun in den verschiedensten Brauntönen. Die in denselben Farben, aber etwas
dunkler, überall-stehenden kleinen Flecke sind am stumpfen Ende gehäuft, wo auch
einige schwarze Punkte auftreten. — k = 1,36.
Cracticus nigrogularis nigrogularis. Stücke in Nehrkorns Sammlung besitzen hell-
braunen Grund ohne Spur von Grau oder Grün, darauf einen hellgraubraunen Flecken-
kranz am stumpfen Ende, sonst nur ebensolche kleine Spritzer, oder sie sind dort
nur licht gewölkt, abgesehen von einigen verloschenen Fleckchen überall. Ein weiteres
Ei hat mitteldunkel braune und fast schwarze Flecke. Ähnliche liegen im Britischen
Museum: olivgrau bis braun oder steinfarben gegrundet, umberbraun bis rosabraun
gefleckt, besonders in Form einer wolkigen Zone oder Kappe am breiten Ende, da-
zwischen einige schwarze Punkte und Sprenkel. Nach CAampgeErL (1901) kurzoval,
glänzend, bräunlicholiv oder graubraun, besonders am dicken Ende in dunklerem
Ton derselben Farbe verwaschen gefleckt oder mit wolkigen Flatschen. Dagegen
sagt NoRTH (1889): rotbraun bis apfelgrün mit feinen und gröberen, hell umber-
braunen, bräunlichschwarzen Flecken nebst einigen schwarzen Punkten. — k = 1,36.
Cracticus quoyi quoyi, spaldingi und rufescens. Ein Nehrkornsches Stück erscheint
wie ein blasses, fast nur am stumpfen Ende geflecktes, kleines Corvus-Ei. Es zeigt
auf blaßgrünem Grund hellolivgraue und graue zum Teil rundliche Flecke. Andere
haben auf grauem Grund Kranzflecke in grauen Tönen, weitere dagegen violette
bis schwarze. CAMPBELL (1901) gibt an: sehr schön graugrün, spärlich, aber kühn
gezeichnet mit rundlichen Punkten und Blattern in Sepia und Umber, dazwischen
einige schiefergraue Unterflecke. Die Flecke sind heller umschattet, wie ausgelaufen.
LE SovEr besitzt ein Gelege, welches kleinen Kräheneiern (Corvus) im Farb- und
Zeichnungscharakter ganz nahe kommt. Nach CAayLey (1933, S. 163) sind die Eier
graugrün oder rahmfarben mit rundlichen, umberbraunen und dunkelgrauen Flecken,
die nach dem dicken Ende hin dichter werden. Dagegen zeigen sich im Britischen
Museum die beiden ovalen bis breitelliptischen Eier auf blaß milchkaffeebraunem
Grund mit grünem Hauch blaßolivbraun gefleckt und mit wenigen lavendelgrauen
Unterflecken als im ganzen recht helle Eier. — k = 1,37.
Gymnorkina tibicen. Zwei Haupttypen: grünliche und bräunlichrote. Die gut kennt-
lichen Eier aller Unterarten variieren ungefähr in denselben weiten Grenzen, wobei
die Gestalt zu Längsstreckung neigt. Die Grundfarbe ist vorwiegend bläulich- oder
grünlichweiß bis grau, in frischem Zustand intensiver getönt. Nicht selten kommt
auch ein leicht bräunlich bis rötlich gehauchter Grund vor, der dann eine rostbraune
bis braunrote Zeichnung trägt, im Gegensatz zu der olivbraungrünen bis schwärzlich-
graubraunen bei den übrigen Stücken. Kaum ein Gelege gleicht dem anderen, da
der Zeichnungscharakter ungemein abändert. Dieser kann folgende Erscheinungen
darbieten: 1. Überall große und kleine flächenhafte, zum Teil flatschige Flecke
Passeriformes: Cracticidae 657
unregelmäßiger Form, die teils einzeln stehen, teils sich überdecken oder zusammen-
fließen. Farben: graubraun, olivbraun, hell und dunkel, grünlichhellbraun. Unter-
flecke blaßschiefergrau. Gesamteindruck dieser grünlichen Eier recht ähnlich grob-
fleckigen, hellen Kräheneiern (Corvus).
2. Ähnlich wie vor, in denselben Farben, ebenfalls über die gesamte Oberfläche
verteilt und zwar gleichmäßig und ziemlich dicht, aber mehr in Gestalt länglicher
Spritzer und schmaler Wischer, geraden und gebogenen, die da und dort zusammen-
fließen und so gleichfalls bei Corvus vorkommen.
3. Scharf abgesetzte runde bis ovale, mittelgroße Blattern schwarzbrauner Farbe
am oberen Eidrittel, fast immer von etwas helleren Schatten umgeben, wodurch die
Flecke tiefliegend erscheinen. Auf der übrigen blaugrauen Oberfläche nur feine,
unauffällige helle kleine Kritzel und vereinzelte Fleckchen, die alle nur locker stehen.
Gelegentlich sehr große schwarzgraue, abgerundete Flatschen, die in weite hellbraune
Schattenflächen auslaufen. In roten Tönen nicht beobachtet. Dieser und die folgenden
Typen völlig unähnlich den Kräheneiern (Corvus).
4. Der blaßgrünblaue Grund ist gänzlich überzogen von hell braunrötlichen, meist
äußerst feinen Längsfäden und mehrfach gewundenen Fasern in verschiedenen Rich-
tungen, darunter hier und da ein hellvioletter Schatten als Unterfleck. Dieser Typ
kommt mit besonders zarter und blasser Zeichnung vor, zwischen der viel- Grund
zu sehen bleibt, aber auch mit ganz dichten und dann dunkelbraunroten, in mehreren
Richtungen verlaufenden, kurzen und längeren Stricheln, Fasersträhnen und Längs-
fleckchen, so daß ein braunroter, erythristischer Gesamteindruck entsteht. Bei einer
anderen Variante erscheinen die Strichel in große, hellrostfarbene Wolken ausgelaufen
mit einigen Linienzügen und wenigen graublauen Blattern als Unterflecken.
5. Rahmfarbener Grund, mit groben und zarteren, hell kastanienbrauen Flecken
überall dicht besetzt, nebst einigen grauen dazwischen; die Flecke sind unbestimmt
begrenzt und erscheinen fast wie bei abgewaschenen, gelbbraunen Falkeneiern (Falco).
6. Hell olivbräunlicher bis olivgrüner Grund mit ziemlich gleichmäßig überall
verteilten, locker stehenden, hellen und dunklen, meist runden Blattern von geringer
bis mittlerer Größe und olivgelbbrauner und verloschen schiefergrauer Farbe, ab-
gesehen von Größe und Gestalt wie Eier von Cyanopica.
Diese nach Stücken meiner eigenen Sammlung beschriebenen Typen geben den
Rahmen ab für weitere Färbungsvarietäten, wie solche bei NorTH (1889), CAMPBELL
(1901), MATHzws (1919), James (1970, S.136) und im Car. Brır. Mus. (1905) ausführlich
abgehandelt werden. Die dort angegebenen Unterschiede für die einzelnen ‚Arten‘
sind meines Erachtens nur individuell, nicht für die Spezies charakteristisch. Dies
gilt auch für die wechselnde, meist längliche Eigestalt (k = 1,39—1,47) und den teils
deutlichen, teils ganz fehlenden Glanz der Oberfläche. Die durchscheinende Farbe
ist sowohl bei den grünlichen als auch bei den rötlichen Eiern grün, im starken direkten
Sonnenlicht aber gelb. Inmitten des leicht gerauhten Kornes fallen die etwas weit-
läufig stehenden Poren nicht sonderlich auf.
Es gibt nur wenige Arten, deren Eier bei so geringer Variation der Grundfarbe
so ungewöhnlich stark im Zeichnungscharakter abändern. Trotzdem verbleibt diesem
Eigentümliches genug, um den Kenner Gymnorhina-Eier auf den ersten Blick als solche
erkennen zu lassen, wenn nicht gelegentlich einmal besondere Ähnlichkeit mit Corvus-
Eiern vorliegt. (Taf. 12, Fig. 8.)
Strepera. Die Eier aller Arten dieser Gattung (früher eine eigene Familie) kommen
in Größe, Gestalt und Zeichnung, in Korn, Poren und nur mäßigem oder gar keinem
Glanz denen unserer Krähen (Corvus) recht nahe. Sie sind jedoch durch ihre Farben
sehr charakteristisch und auffallend von jenen verschieden. Trotz Verwandtschaft
mit den Krähen keine Spur von Grün und Sepia, sondern im Gesamteindruck vor-
49, Oologie, 38. Lieferung
658 29. Ordnung
wiegend eigenartig mitteldunkel graubräunlich in verschiedenen Tönen, oft mit zartem
Rosa-Hauch, der deutlicher wird, wenn man Weiß oder Grün dagegen hält. Der meist
graurötlichbraune bis rosagraue Grund kann sehr hell, aber auch ziemlich dunkel
sein, gelegentlich selbst rahmfarben und lehmbraun. Nur auf hellgrundigen Stücken
treten die gewöhnlich nicht scharf markierten, eher verschwommenen, mittelgroßen
und kleineren, ungefähr gleichmäßig aber recht lose verteilten Blattern und Flecke
deutlich hervor. Auf dunklen Eiern gehen sie zuweilen wie Wolken und Schatten in
die Grundfarbe über, soweit sie nicht als Kappe oder lockerer Kranz am breiteren Ende
ausgeprägter zusammenstehen. Zwischen den nicht sehr dunklen, graubraunen oder
bräunlichweinroten Oberflecken sieht man da und dort verloschene lilagraue Unter-
flecke, seltener vereinzelte schwärzliche Haarlinien oder Spritzer. Manche Eier tragen
eine sehr dichte Kappe völlig zusammengeflossener Flecke, die sich nach der mäßig
ausgeprägten Spitze hin allmählich in kleinere auflösen und schließlich verlieren.
Als unruhiges Schalenkorn erscheinen die großen, dicht stehenden, fein gestichelten
Gruppen von Prismenköpfen wie breit gewalzt, so daß die Vertiefungen zurücktreten.
Unter der Lupe werden grobe Poren deutlich sichtbar. — Gewöhnliche Eigestalt,
etwas gestreckt, deutlich verjüngt. Zur Unterscheidung der verschiedenen Spezies
langen diese Unterschiede nicht aus, weil die erhebliche Färbungsvariation anscheinend
bei allen Arten dieselbe ist, ebenso die Größe der Eier.
Strepera graculina robinsoni, graculina und ashbyi besitzen vor allem hellere Eier
mit blassem Grund und blasser Fleckung. — k = 1,41.
Strepera graculina crissalis. Bei den 12 Eiern im Museum Tring, die ich nur sah,
aber nicht maß, gibt es eine sehr dichte Kappe zusammengeflossener Flecke, die sich,
wie oben beschrieben, nach der Spitze verlieren.
Sie seien als Durchschnittstyp der Gattung hier beschrieben: Grundfarbe trüb-
rosagrau (an Callaeas anklingend), blaßbraun oder hell weinrötlichbraun. Darauf
meist unbestimmte, sehr oft verloschene, manchmal aber deutlichere, etwas spärliche
Frickel und mittelgroße Blattern, z. T. streifig ausgezogen in dunkleren Tönen der
Grundfarbe. Auch umberbraun und purpurbraun, dann und wann mit einigen bleichen
lilagrauen dazwischen, unregelmäßig über die Oberfläche verteilt oder oben zusammen-
gedrängt.
Strepera fuliginosa. Zahlreicher finden sich hier die dunkelsten Typen der Gattung,
oft mit tief bräunlichweinroter Zeichnung, die aber nicht dick aufgetragen ist. —
k = 1,38.
Strepera ‘versicolor versicolor. Grund rahmweiß bis rosabräunlich (ziegelfarben);
Fleckung wie bei S. graculina. — k = 1,42.
Strepera versicolor plumbea. Etwa so dunkel wie 8. fuliginosa. — k = 1,41.
Strepera versicolor howei. Wie S. graculina. — k = 1,40. (Taf. 12, Fig. 9.)
Strepera versicolor melanoptera und intermedia. Wie S. graculina, also ziemlich hell.
— k = 1,43 bzw. 1,34.
Strepera versicolor arguta. Auch vom hellen Typ. Eine Anzahl graulicher Eier mit
einzelnen dunkel rotgrauen, brandfleckigen Blattern und Fäden als abweichender
Typ im Britischen Museum erinnern an entfernt ähnliche von Gymnorhina tibicen. —
k—= 1,48,
Passeriformes
659
Cracticidae
uoregsny-MN
(uossnS310 7 UOA AOIM)
ujosuf xNeagseoanyum,p N -PUrLIGONLT,
(Saoqjogges 'n uposu] nıy UoA dal)
ujosuf
-uended-MN mn -M “nıy eoumanon
U9IUBWSETL,
(I, 4099n.459P =)
(M TOgjne) erIoyoıy "N
( dacne) sopempnsnoN “puejsusond)-OS
MN 199 ID INSPLET 9-08
(#—g/2 :Ayu9Aıog)
ELIOPIA-M N SÖeApnsnaN-N “(OS
n N Jogne) puejsusond) Stq uareajsnYy
-MS 'n uorpesny-M uojeayusz WOA
(umropaaL-N g/T :1PSnaıy)
uoleagsny-N
(puejsuson®) Z/T :1E3n91y)
josurqfepgp-Y11orX dey
(og tquınraeqg g/D :pueg)
eaumanoN-OS
%09
IE
LS
YoL'g
8‘GT
09°L
z8s‘ol
Tr°Or
08°8
08°L
710
geT‘o
zero
°z7°0
E10
SITO
g0r0
6370
970
19°0
20)
980
380
1'37
10677
Erz
927
T'og
erE
see
ürds
08
(uaoyuyoN 208 'S “TO6T TITEAMV/))
3.09°0- 390 = 9'837 -8°17 X L'08 #67
pINo9 sngwond sıwmpmbo4bru Sn9y9n4)
(ag Auoyag “Durzz, "sup n 9681
LAHIUVH 718 8 ‘C06F "SAN "usa LVO)
3 09°9— 690 = ITS — L'ETX 9°GE 488
AB sapma1ay SNINSSDI SNIYMA)
(199949MUuoyag “uUIoN
-IyoN ‘“Surı] "SO '687'S "7881 YaAaN)
3 890-880 = ST3-LETX Y'GE-8TE
("ppog) snaıssp9 sna1ssn9 SNIYMA)
(19199 MUoyaS “uroyayoN
‘#13 °S ‘06T "sam “wag "LV) 08 'S
‘I067 Tıaaanv) °:£9'S '688T HLMYON)
3 890-680 = #75 813 X 9°GE 065
(pno9) smad4auno snjumb4o] SNID4)
(19199 MUugyag ‘sa "LIag 'LVI :F08 'S
‘7067 Tıaaanvg) °I9°S ‘6881 HILYON)
3.090880 = FE3 ET X STE 0 LE
(weygerg) snaonb.o} snyonb.«407 SNIWIDAI
(uIOyayoN
‘PL6T SIN ALNaAUAaS ypeu „ :E15 8 ‘co6F
"SA ‘LIag "LVO '£08 'S "TO6T TITIANVN)
3 29°0—09°0 = 683 E13 X 078-008
pno9 sn.421doana] snonb.40} SNIYIDAI
(1867 "IPOTLq ‘ONATHAEL, °F)
3 68°0-98°0 = 1'72 -F13 X 96° 68%
'PI9 snayuab.ım snyonb.40l SNIYIDA)
(1867 "org ‘ONATHASLL, 'L)
3 19°0-E80 = 083-977 X 078-1 TE
"gen ıduay syozuau SNIYMAI
(767 anvY)
sIIOq]V.P ®
"peageg sapmguaus SUpguau SNIYID4I
66
07
GG
&
ee ee ee a le
sy
19)
P
n)
4
V
ee Se | De ee ee ee sr EEE EsEEREREERGEEER
42*
29. Ordnung
660
(HET 'S ‘0L6T SAnVL !ILE'S
"SO6T "SA LIHEL Lv) :09 '8 6887 TLLNON)
3 78°0—99°0 = 618-173 X TOP —6'E€
uvruwwusuL, | LG 2'871 9FL'0 LLO 8'097 z'ıE ('pPIH) vonojodfiy uaoıqıy punyıouuhr) Tg
(1OYPMUOLIS "SUHLLOE !9ET "S 'OLGT SA Ah
"ILS 'S '9067 "SAW “Liagg "LVD) :565 8
‘7067 TIaaanvg °69°S *6881 nt
BLIOOTA 3 07°T—-38°0 = 408 #95 X OFF —E'9E
"Ss mn (M Jogme) wımagsny ugnog-S | %6'G 2'091 ı37°0 965°0 0'87 gor "PIH Pjouoana uaoıqız munyıouuhr) 79
(a9yyomuoyag
“suoagogg ınppumag Sn NRDELENNN
BIBAJENV yINOoS :OL3 'S "S06T "SAW “wug "LVO °065 '8
-N WMOPTA-N "SOILAPNENON .u00rg%7 ‘1067 Tıaaanvı) :89°'S ‘6887 HLUON)
[Psurgq[eH 3 90°T—08°0 = L'TE— PIE X Z'EH —EZE
10x dus uopayuoz aop S purjsusond) (gef) uaorgıy
N WNLIOFLLIOL-PION-O :onurbauonıuıaı | 19 8‘'p] Lslo 06°0 e'1z p'sg n (pe) omurdasonıua ung munysouufr) gg
(sIR 'S ALNTAUGS)
vukoosen) 'n Aoan) 0'7E-EFEX 097 -07E
OT Uossn]T Up uoyosiaz uorwajsny- AN 6'701 = = s'ız 8'68 URDTJIIN S2.80.0Buo7 uoaıgıy punyıouuhn G]
[PsurgpH OA . (uION.ıyoN
deyp op S purjsupond-N .suaosofn.d :3L3 'S ‘9067 "Saw wug 'uvo ‘665 '8
UONBAJSNY ‘067 TIaganv)) !£88Z'S 'PSsIT uuaım)
"N 980 mn upsup nıy Sabwpppds 3 91‘0—09°0 = 9°98— 0'835 X 8'9E -3'7€
ujosuf uUHUD99]08 STA OCT suaosafn.ı "n Auswayg
uoArp MN 'n N Yu woumanon :ıfonb | %g'g 911 Ir1'0 19°0 f‘0z LE ıburppods *(uossorf) vhonb ıhonb snorgon«) 91
(uIos.ıyoN
("de sngsngo« —) "GLa Ss °006I "Saw "wıag "UvVD TOR 'S
BIBIIENY YINMOS ‘1061 Pa :z9°S ‘688T HIMON)
sıq AM dely "mn BLIojorA SIq S (Josurg[e}H 990-870 = 678-633 X 8'9IE— 00€
10 deyy) Joa Jımanoyg uoA uorwagseny | pc 08°6 rz1°0 eg) 1‘pz 8zE (© = 10) sıwpnbo4hru ET SAND 08
(PL61 SW N GIB 'S ‘1967 AUNMAUAS)
L(a—g)p/o :Ayuoaaog] 798 —0'87 X (< u [Bwuo) g’9E— ‘TE
(N woyoy aoggne) uoreagsny- AA 'n -[eayuoz - 91°01 - _ r‘rZ z'ge "URN ?7400870y saunnboabru SnOLOnAY) 8]
a4 9) p 3 el V
661
O00ARSURNT [osuf 'n eırengsny ynog-OS
(BLOPTA-MN Z/] :a9dnoıyy)
CLBAISNV
YINOS SEPUHZUH1FUR. "N BIIOWTA-MN
Ip)e—g/o :AyuoArog]
uoreagenv- MS
(SMOYFRIN Moara —)
BTIOYITA-O N SOLMAPNENON-O
(OBIIS-SSRE) HSursy [OSUT 'n uOTUrWsRT,
9MOH PAOT [osuf
Passeriformes: Cracticidae
RIIOJOLA UhqYSD
sommpnenoN !Durmom4b
purpsuoond) !7uosUurgo.«
(a z)g/0 :Ayuoanog]
(w10o po :a08noayy)
eAnpeW SIq OS
“I9AIY] uostyaanm SIG N uoremeny- MS
997°0 gT‘7J
er]‘o 90°7
1970 01
6870 el
(9x0, oyaıs)
SETO 860
OFT'O 980
("sn 'gragg “oyyoMmuoyag
“urfaog] "BO “UIONAUON *’SATA "TIusr
Lv) * 06T TINadamV/) :99 'S ‘688] HLUON)
3 09°7 00° = 6°TE—FLZX 019 —9°0F
PINoH »4adoungpu 40709154004 n1adasıs'
(1867 "YoTıq “ONATHATT, "F yoeu)
3 10°T—90°T = P°08 868 X EE7 -8'0F
SMOUJEN WMOoYy KOJOII549U nAaadauns'
(19449 MUOY9S "ULoN
-IyoN :FL61 SW N EIF 'S ‘1967 ALNHAHES
“Saw “TwIag "LVO :09 'S ‘T067 Taadanvn)
3 93°1—96°0 = 618-866 X 08F —L'6E
pINOH voqwngd JOJ091549Q mawodaans'
(Sn "II “MONSOLT, "A
-uspsoIqg "SH “uroyayon "Say "Liug
"Lv :09 'S ‘TO6T TIaaamv/) ‘6887 HLUON)
3 0#°T 007 = L’IE-L'8EX 99H — ‘IF
(weygeT) KOJOIV549Q JOJOVS4 n4ada.4s'
(sn "Mag “uoıM
SNyA “utoyayoN ‘216 "SAW "“Waug "LVO
°29 °S ‘T067 Tauaamv :688T HLUON)
3 09°T—00°7 = 0'368 985 X 8‘LP FOR
(pmoH9) nsourbiyn[ wuoda.ug'
odarys suppssıu nunnonıb n1adaug‘
("Sn "gagg “uopsoaqg "SU
“uIoyıyoN :809 'S 'ZI6T SAW “Lug "LVO
89 '9 °TO6T TIATANV/) :GG 'S ‘6887 HLNON)
3 18°1 610 = TE 098 X 9ER —-L'SE
"ygen »fgysp 'n (oyıy My) purnonıb
“SMOUTETL 2uosurgo4 purmonıb nıadauısı
(1867 "Woraq “OAATHAUTL "f yoeu F
"YET 'S ‘06T SIWVL :FL6T SW n LTR 'S
“LIGT SEAN 965 9 ‘7067 TIATaNVY)
3 360-810 = 168 1'906 X E'EF 998
pqd we) SUDS.L0P URN Dunydouruk 0)
8]
Ir
LG
8]
LF
29. Ordnung
[uopsoac "BON "ULONLUE N : (*[]09
10AOWwoy) yanpyurayg Sn Sn "gl
:69 8 '7061I TIAUdWV,) "LI "'S ‘6881 HILMON |
3 08°T EV T = 038-9 LE X 9°L7 0'8€
UHTURLUSR, %0'9 261 SCI’ 01 P'O8 Per pInoH »ynbd.m «oonıs.1aa naadaugı €z
(snW
“Jtag] :T9 'S "TOGT TIATAaNV,) !688] HLNON)
8 LET-9TT = VTE-L68 X 69P—8'6€
BIwagsny ygnoguroakspn y1oA upsurg[eH %29 ‘07 29170 021 Fr odarys mrpauopur 1ojomsuaa naadaust G
au ) P 3 ‘l V
662
Passeriformes: Ptilonorhynchidae 663
Familie Ptilonorhynchidae, Laubenvögel
Anordnung und Benennung nach Mayr, in: PETERS 15, 1962, S. 173— 181.
Die Eier der 17 in Neuguineas und Australiens schwer zugänglichen Wäldern, weniger
in offenen Gebieten und dann nur in Australien brütenden Laubenvögel sind noch
recht unvollständig bekannt und selbst in australischen Museen spärlich vertreten.
A. N. Foot fand das erste von Chlamydera maculata maculata 1873 (RAmsAy, Proc.
Zool. Soc. London 1874, S. 605), A. E. Cox das von Pfülonorhynchus violaceus violaceus
1876. NorTH [Nests and eggs Birds Australia, Austr. Mus. Cat., Sydney, Austr. Mus., 12,
1889, S. 189ff., sowie id., Austr. Mus. Spec. Cat. 1, Bd. 1, Sydney, Austr. Mus., 1901,
S. 36— 73] und CAMPBELL (Nests and eggs of Australian birds, Melbourne, Autor, 1901,
S. 191—208, S. 1078) haben die Eier von 11 Formen australischer Arten beschrieben
und NEHRKORN (1910, S. 356— 357) kurz die neun, darunter zwei andere, seiner eigenen
Sammlung. (Bis heute sind nur 2 Arten den damals bekannten 10 hinzuzufügen, aber
keine neue Gattung, und oologisch ist von der allein fehlenden Gattung Archboldia
wohl nichts Abweichendes zu erwarten. Hrsg.) Dann gab HArTERT (Nov. Zool. 17,
S. 484-491, Taf. 10, 1910) eine umfassende Übersicht, vor allem über die damals in
Tring vorhandenen 7 Formen. Als ich diese Sammlung 1928 sah, war sie auf 10 Formen
(31 Stück) angewachsen, die ich.mit den Paradisaeidae zusammen 1929 (Nov. Zool. 35,
S. 204— 211) beschrieb. (Weitere Angaben zur Erforschungsgeschichte stehen im Kapitel
Paradisaeidae, S. 673, da es nicht gelang, die untersuchten Stückzahlen beider Familien
genau zu trennen. Hrsg.)
Bei den 12 Arten sind folgende Eitypen gefunden worden, deren Vorkommen bei
den Paradisaeidae gleich mit angeführt wird: Typ 1 (den Paradisaeidae fehlend):
Die Eier der 4 ersten Gattungen: Ungefleckt hell: Avluroedus (dunkel rahmfarben
bis erbsengelb, abe rA. crassirostris maculosus meist rahmweiß mit grauem Hauch);
Scenopoeetes (rahmfarben, auch grauweißlich); Amblyornis (rahmweiß); Prionodura
' (rahm- oder reinweiß).
Typ 2 (auch bei Paradisaeidae vertreten): Nur eine meist zwischen den Gattungen
des 3. Typs untergebrachte Gattung: Kleine bis mittelgroße Flecke wie bei vielen
anderen Familien gestaltet und verteilt: Piilonorhynchus (rahmfarben, bräunlich,
auch mit grauem Ton; scharf oder verwischt gefleckt, selten mit Stricheln und Schnör-
keln).
Typ 3 (auch bei Paradisaeidae vertreten): Vorwiegend in Richtung der Breitenachse
verlaufende Wirr- und Schlangenlinien: Sericulus (grauweiß bis -gelb, meist gleich-
mäßige Linienverteilung); Chlamydera (grau, rahmfarben, grünlich oder bräunlich,
Zeichnung hellbraun bis schwarz; bei C'hlamydera nuchalis auch rahmweißer Grund
und manchmal nur kurze Strichel; Ohlamydera cerviniventris meist mit grünlich ge-
töntem Grund). Diese beiden Gattungen werden im System meist durch Ptilonorhynchus
getrennt, so auch im Text, aber nicht in der Stammbaumskizze bei GILLIARD (Birds
of Paradise and bower birds. London, Weidenfeld & Nicolson, 1969, S. 41).
Typ 4 (nur bei Paradisaeidae, s. S. 676).
Weiße Grundfärbung findet sich bei Amblyornis und Prionodura, hell bis dunkler
rahmfarbene bei Ailuroedus, die variabelste bei Chlamydera (siehe bei Typ 3). Dichtere
Fleckung am stumpfen Ende herrscht bei Typ 2 vor, mehr gleichmäßige Verteilung bei
Typ 3. Fleckenfarben braune neben lilagrauen Tönen. Die Innenfarbe ist gelb bis orange.
Rein elliptische Gestalt kommt kaum vor; es überwiegt das mäßig verjüngte Oval,
mit stärkerer Zuspitzung eigentlich nur bei Pirilonorkhynchus, mit Längsstreckung
gelegentlich bei Ariluroedus und Scenopoeetes. Die Oberfläche ist glatt, Abweichungen
von der stetigen Wölbung kommen manchmal als kleine Unebenheiten vor. Der Schalen-
glanz schwankt wahrscheinlich individuell; er kann mäßig und stark sein. Das Korn
664 29. Ordnung
ist immer recht zart. Selten wird es durch die auf einzelnen Eiern deutlicher aus-
gebildeten stich- oder kraterförmigen Poren und durch die nur mittels Lupe erkenn-
baren breiteren Grübchen zwischen feingrießigen Erhebungen gröber. Da die Vogel-
größe nicht sehr verschieden ist, schwankt die Eilänge nur zwischen 33,2 und 48,0,
die Breite zwischen 22,8 und 32,3 mm, das Schalengewicht aber zwischen 0,59 und
1,69g und dementsprechend auch erheblich das durchschnittliche Frischvollgewicht
zwischen 11,2 und 21,6g. Aus den beiden letztgenannten Faktoren ergibt sich das
Relative Schalengewicht von 5,5 bis 7,3(? 8,6)%, Dis = 6,2% (8,6% negiert), die
durchschnittliche Schalendicke von 0,13—0,16, D,; = 0,153 mm. Zur Errechnung
der Relativen Eigewichte wurden Körpergewichte der Weibchen den folgenden Quellen
aus Literatur und Sammlung entnommen: HEINROTH (J.f. Orn. 70, S. 221, 1922), RırLey
(Bull. Peabody Mus. Nat. Hist. 19, S.51, 1964), GILLIARD & LEcRoY (Bull. Amer.
Mus. Nat. Hist. 132, S. 272, 1966), DramoxD (Publ. Nuttall Orn. Club, Cambridge,
Mass., 12, S. 342, 1972) und LONGMORES zahlreichen, mit Dank erhaltenen brieflichen
Angaben über Vögel des Australian Museum, Sydney.
Q-Gewicht Art RG Q-Gewicht Art RG
ing in‘% ling in:%
210 Ailuroedus crassirostris 133 Ailuroedus buccoides
melanocephalus 10,3 geislerorum 11,4
204,2 Ailuroedus crassirostris 130 Chlamydera cerviniventris 12,4
crassirostris 10,6 | 113 Amblyornis m. macgregoriae 15,5
202,7 Ptilonorhynchus v. violaceus 9,9 | 112 COhlamydera lauterbachi
140 Chlamydera maculata guttata 8,0 uniformis 15,6
138 Ailuroedus buccoides stonii 11,1 | 108,7 Sericulus ch. chrysocephalus 12,7
Ganz aus der Reihe fallen die kleinen Eier von C'hlamydera maculata guttata, die
sich aus dem einzigen Weibchengewicht ergeben; sonst legen Chlamydera und Sericu-
lus unter den bisher bekannten Laubenvögeln die relativ schwersten Eier. Vergleich
mit Paradisaeidae s. S. 677.
Wenn, wie GILLIARD (1969, S. 41—46) vor allem nach der Balzweise zu begründen
versucht, die Laubenvögel in wenigstens drei Stammlinien aus Ur-Lauben-Paradies-
vögeln hervorgegangen sind, würden oologisch zwei Nachbarstämme, die aus an senk-
rechten Stämmchen balzenden Vorfahren abzuleitenden vier ersten Gattungen, die
zum Teil (noch) keine Lauben und sonst Pfeilerlauben bauen, auch oologisch gut
zusammenpassen. Als zweite Linie könnte man die Laubenvögel, die Straßen bauen,
von Vorfahren ableiten, die auf waagerecht verlaufenden Ranken balzen. Diese würden
oologisch allerdings zwei ziemlich verschiedene Typen bilden. Vom Stamm Archboldia
ist oologisch noch nichts bekannt.
Ailuroedus. Alle Eier dieser monogam lebenden Gattung werden in ein klumpiges
Napfnest gelegt. Sie sind langoval, mäßig glänzend, seltener ganz glatt, meist dunkel-
rahmfarben bis erbsengelb. Einfarbigkeit in solchen Tönen finden wir bei größeren
Vögeln nur unter den hellgrundigen Eiern einiger Phasianidae und Anatidae wieder.
Die Schale ist feingrießig, aber doch glatt, soweit sich nicht gelegentlich flach erhabene,
feine Querwellen auf der Oberfläche zeigen. Nicht sehr auffällig sind die vielen seichten
Poren, die wie mittels einer Nadel schräg eingestochen erscheinen. Die durch das
Bohrloch sichtbare Farbe ist bei allen mitteldunkel orangegelb. Eier in allen größeren
universellen Sammlungen.
Atluroedus buccoides stonii. — k = 1,58.
Passeriformes: Ptilonorhynchidae 665
Ailuroedus buccoides geislerorum. Wohl die dunkelsten Eier dieser Gattung (siehe
auch A. crassirostris melanocephalus, S. 665). — k = 1,50.
Ailuroedus crassirostris crassirostris. — k = 1,40.
Ailuroedus crassirostris maculosus. Nur dieser (und der folgenden?) Form fehlt, soviel
wir wissen, meist der gelbliche Ton. Er wird durch einen rahmweißen mit grauem Hauch
ersetzt. — k = 1,45. (Taf. 12, Fig. 10.)
Ailuroedus crassirostris melanotis |Der oben besprochene Weißohrkatzenvogel,
4. buccoides, ist kleiner und lebt in tieferen Höhenlagen Neuguineas als der Grün-
katzenvogel, A. crassirostris, aber dieser legt nicht überall größere Eier, was noch
zu erklären bleibt. Sehr kleine Maße der in S-Neuguinea nach Ranp (Bull. Amer.
Mus. Nat. Hist. 79, S. 352, 1942) einfarbig hell olivbraunen Eier des einzigen bekannten
Zweiergeleges könnten zufällig das kleine Extrem sein (Hrsg.). — k = 1,58 (1. Ei
1,69, 2. Ei 1,48).
Ailuroedus crassirostris melanocephalus. Eins der drei Stücke des Tring-Museums
war von Nehrkorn ‚Sattelberg‘‘ signiert und wurde von ScHALow (1915, S. 285f.)
unter geislerorum angeführt, fiel aber schon HARTERT (1910, 8.485) als sehr groß
auf; wohl deswegen wurde in Schönwetters Kladde Weiske als Sammler und SO-
Neuguinea als Fundort angenommen. Es mißt 45,0 x 29,1 = 1,25 g und ist damit für
die kleinere Form A. buccoides geislerorum wohl zu groß. (Da dies aber nicht sicher
ist, stelle ich das Stück in eine Sonderzeile der Liste. Hrsg.) — k = 1,41.
Scenopoeetes dentirostris. Ein hinfälliges, flaches, im dichten Laub verstecktes Nest
des in Vielweiberei lebenden Zahnkatzenvogels enthält die gestreckt ovalen (k — 1,50),
gelblichrahmfarbenen oder grauweißlich wie bei Ailuroedus crassirostris maculosus
gefärbten und eher noch glatteren Eier, die sonst ganz vom Charakter der vorigen,
am nächsten verwandten Gattung sind. Eier nur in Tring gesehen. Das irrtümliche
Breitenmaß HArTERTS (1910, S. 485) findet sich auch bei ScHarow (1915, S. 235):
18,05 statt 29,3 mm. ö
Amblyornis inornatus. Die dieser Art zugeschriebenen Eier gehören A. macgregoriae
siehe Liste).
Amblyornis macgregoriae macgregoriae. Im ziemlich tiefen, festen Napfnest des poly-
gynen Gelbhaubengärtners liegt das mäßig glänzende, einfarbig rahmweiße Ei. Es
ist nicht gelblich, obwohl NEHRKORN (1910, S. 356) es als gelblichweiß beschreibt,
und von reinerem Ton und oft länger gestreckt als das des Asluroedus crassirosiris
maculosus. Das Korn ist glatt, unter der Lupe sehr feingrießig, die Innenfarbe gelb.
Nicht gut sichtbar sind die stichartigen, aber nur flachen Poren. Ein nicht in der Liste
stehendes zerbrochenes Ei vom Hagenberg maß nach GILLIARD ( 1969, S. 309) etwa
A 28mm — KE 1A.
Amblyornis subalaris. Ein im Britischen Museum dem Rothaubengärtner zuge-
schriebenes Ei (Car. Brrr. Mus. 5, 1912, S. 451), wie die meisten von A. macgregoriae
macgregoriae von E. Weiske in einem Napfnest SO-Neuguineas gesammelt, gleicht
diesen vollkommen bis auf das um die Hälfte höhere Schalengewicht, obwohl der Vogel
wenigstens nach den Flügelmaßen merklich kleiner ist. Aus so vereinzelten Stücken
läßt sich freilich kein Schluß ziehen; doch ist zu vermuten, daß die dicke Schale nicht
normal ist, obwohl ihr äußerlich davon nichts anzusehen ist. Das Relative Schalen-
gewicht (Rg) macht solche Fälle besonders deutlich. — k = 1,41.
Prionodura newtoniana. Ein tiefes Napfnest im Regenwald enthält das einfarbig
rahmweiße oder reinweiße Gelege des Säulengärtners. Die sehr feine Körnelung der
666 29. Ordnung
glatten Oberfläche läßt sich nur unter der Lupe sehen, wobei auch einzelne Poren
sichtbar werden. So das bebrütete Einzelei in Tring und zwei unbestimmte im Briti-
schen Museum. Die Zugehörigkeit auch dieser zu Prionodura unterliegt für mich keinem
Zweifel, weil die äußere Erscheinung (Gestalt, Farbe, Korn) genau übereinstimmt,
die Maße eine zu erwartende Variationsbreite nicht überschreiten und alle drei Eier
Mitte bzw. Ende November 1908 in derselben Gegend (Bellenden Ker-Berge) ge-
funden wurden, offenbar von demselben Sammler George Sharp. Vergleichbare andere
Eier sind von dort nicht bekannt. Denkt jemand an die wohl einzige dortige Taube
mit Eiern derselben Größe (Megaloprepia magnifica assimilis), so wird sich doch kein
erfahrener Oologe täuschen lassen, weil Gestalt, Korn und Schmelz der Schale ganz
anders sind. — Drei Einzeleier, die einzigen gewogenen, seien angeführt: Tring:
34,7 x 25,0 — 0,59 g. Britisches Museum: 35,8 x 26,2 = 0,75 g und 36,0 x 25,6 —=0,77 g.
Relativ kleine Eier, wenn man die der übrigen Laubenvögel außer der etwas fraglichen
Chlamydera maculata guttata vergleicht. — k = 1,39.
Sericulus chrysocephalus chrysocephalus. Ein hinfälliges, flaches Napfnest in diehtem
Blattgewirr trägt die Eier des Gelbnackengoldvogels, die ganz so aussehen, wie die
unten bei C'hlamydera cerviniventris beschriebenen, aber ohne jeden grünen Hauch
in der grauweißen, häufiger graugelben Grundfarbe. Von ihr hebt sich das lehmbraune
und dunkler braune Liniengewirr deutlich ab, das da und dort zu Bändern verbreitert
ist, wozu als Unterflecke stark zurücktretende graue Züge und Blattern kommen.
Die Verteilung ist ziemlich gleichmäßig überall oder nach dem dieken Ende zu un-
bedeutend verdichtet. Die vielfach gewundenen, auch eckig gewendeten Züge verlaufen
in allen Richtungen, vorwiegend jedoch parallel der Breitenachse. Auch hier scheint
einer helleren Grundfarbe eine spärlichere Zeichnung durch nur wenige Schnörkel
zu entsprechen, was einen ursächlichen Zusammenhang vermuten läßt. Die Schale
ist glatt und mehr oder weniger glänzend, die Innenfarbe hellorangegelb. Die krater-
förmigen Poren sind wenig sichtbar. Die Eier sind groß für den Vogel und die der
Kreuger-Sammlung (C. Ryan coll. 1911) nach J. TERHIVUvo (briefl. 1981) noch schwerer
als die nur bis 0,96 g Schalengewicht steigenden übrigen gewogenen Eier. — k = 1,43.
(Taf. 12, Fig. 11.)
Ptilonorhynchus violaceus violaceus. Vielleicht ein wenig offener, aber in einem ähn-
lichen Nest wie bei Sericulus findet man die Eier des Seidenlaubenvogels, dessen Weib-
chen anscheinend mehrere Tage bei einem polygynen Männchen bleiben (GILLIARD
1969, S. 79). Gegen strenge Polygynie spricht auch die Bemerkung von GILLIARD
(l.e. S. 349—351) “polygyny has never been observed”. Hinsichtlich der Färbung
und Zeichnung vergleicht CAMPBELL (1901, S. 191) manche Eier treffend mit denen
von Oriolus sagittatus, die freilich viel kleiner sind. Auch in der Größe ungefähr gleiche
und sonst ähnliche findet man bei bräunlichen, grobfleckigen Rallidae (Gallinula,
Porphyrio). Die Gestalt ist etwas länglicher und am einen Ende stärker verjüngt als
meist bei den übrigen Arten der Familie, der Grund dunkelrahmfarben, manchmal
mehr lederbraun, seltener leicht grau getönt. Meist am dicken Ende ein wenig dichter
stehen die nicht sehr zahlreichen, gröberen Flecke von zimtbrauner, dunkelolivbrauner,
zuweilen mehr rotbrauner Farbe, zwischen denen lila bis purpurgraue Unterflecke
eingestreut liegen. Seltener zeigt sich eine gleichmäßigere Verteilung, und vorwiegend
bleibt dazwischen der größte Teil der Oberfläche frei, abgesehen von einigen kleinen
Fleckchen und Punkten. Dabei sind die einzelnen Flecke teils bestimmt umgrenzt,
teils zerrissen und wie breitgedrückt, da und dort zusammengeflossen. Den ersten,
etwas an hellbraune, am stumpfen Ende locker gefleckte Möweneier (Larus) erinnernden
Typ bildet CaAmpgBELL (1901, Taf. 9), ab, ganz ähnlich dem von Manucodia comrii
in Tring, den zweiten NoRTH (1889). Die Stücke bei Nehrkorn und in Tring ähneln dem
ersten. Der Glanz ist oft gering. — k = 1,50. |
-
Passeriformes: Ptilonorhynchidae 667
Ptilonorhynchus violaceus minor. Die Eier dieser kleineren Form erinnern ebenfalls
an Rallidae, z. B. an besonders am dicken Ende kräftig und etwas grob sienabraun
gezeichnete von Amaurornis phoenicurus, scheinen aber kaum je Strichel oder Schnörkel
aufzuweisen, wie solche bei der Nominatform dann und wann vorkommen. Jedenfalls
fehlen solche den 7 Eiern der White-Sammlung (jetzt im Vietoria-Museum in Melbourne),
nach CAMPBELL (Emu 12, S. 20, 1912, s. auch id., ibid. 13, Taf. 11, Fig. 4 und 6). Das
von Rausay (Proc. Zool. Soc. London 1875, S. 112) angeführte von 40,6 x 27,9 mm
wurde vernachlässigt, da vielleicht schon in den angeführten enthalten. — k = 1,50.
Chlamydera. Die Eier dieses wohl polygynen Genus sind alle in flachen, manchmal
massigen Napfnestern zu finden und ganz absonderlich gezeichnet. Fast immer ziemlich
dicht winden sich lange, dünne und dickere Haarlinien und wurmartige Schnörkel
um die ganze, leicht glänzende Oberfläche, vorwiegend in Richtung der Breitenachse,
aber auch quer gegen diese. Manchmal sind es nur zarte, hellbraune Kritzelzüge; meist
wechseln solche, sich überkreuzend, ab mit dunkelbraunen bis beinahe schwarzen,
breiteren Wirrlinien, die da und dort zu Klecksen zusammenfließen. Statt, wie oft,
das ganze Ei zu bedecken, ist diese Zeichnung zuweilen mehr auf die Gürtelzone be-
schränkt, oder sie läßt das schmalere Ende frei. Wieder andere weisen Verfilzung am
dicken Ende auf, lassen die Mitte unbedeckt und haben am anderen Ende nur ver-
einzelte, dickere Kritzel. Unterflecke sind immer wenig entwickelt, meist in Form
von verwischten Blattern, selten in Gestalt von Haarlinien oder Schnörkeln. Nimmt
man die selbst bei der gleichen Art erheblich schwankende Grundfarbe hinzu, die
grau, rahmfarben, grünlich oder bräunlich sein kann, so ergibt sich eine außerordent-
liche Mannigfaltigkeit der Erscheinung trotz des im ganzen einheitlichen, unverkenn-
baren Charakters. Sericulus-Eier sind ähnlich. Man sieht derartige Wirrlinien und Kringel
auch bei ganz fern stehenden Arten, teils neben anderen Fleckentypen (Uria, Emberiza
u. a.), teils als Regel (Jacana, Bleda, Pomatorhinus, Quiscalus mexicanus, Coccothraustes
u. a.), dann aber meist (wie auch bei Zycocorax pyrrhopterus) nicht so auffallend wie oft
bei den C'hlamydera-Arten.
Chlamydera maculata maculata. Zwei Eier des Kragenlaubenvogels im Britischen
Museum haben blaßgraubräunlichen Grund, ein weiteres grünlichelfenbeinfarbenen,
dieses nur quer bestrichelt und bekritzelt. Siena- und dunkelsepiabraune Wirrlinien
liegen über zahlreichen lavendelgrauen Unterflecken, oft in Blatterngestalt, also
abgerundet und scharf umgrenzt. Außer einer vorwiegend überall ziemlich gleich-
mäßigen Verteilung des Netzwerks bilden sich gelegentlich durch Zusammenballung
und Überlagerung seltsam geformte Zeichnungshaufen, während sonst die Fadenform
überwiegt. Ganz zurücktretende Zeichnung wird unten bei Lycocorax pyrrhopterus
obiensis erwähnt (S. 679). Nehrkorns Stücke haben den Grund hellgrau bis graugelb,
CampgBeELL (1901, S. 198) nennt ihn hellgrünlichgelb, Nort# (1901, S.41) dagegen
grünlichgrau, und diese beiden Autoren sehen die Fleckung teils überall, teils mehr
am stumpfen Ende sitzend, teils an beiden Polen fehlend. Dabei lagern graue, hell-
und dunkelbraune sowie fast schwarze Adern, Schlangenlinien und Blattern in ver-
schiedenen Richtungen übereinander, vorwiegend aber ungefähr senkrecht zur Längs-
achse. Nicht anders sind die Eier im Dresdener Museum, wie denn angesichts der er-
_ heblichen Variation in Grundfarbe und Fleckungsart bei allen Chlamydera-Eiern
die der einzelnen Arten und Unterarten sich kaum werden unterscheiden lassen. —
k= 1,40.
Ohlamydera maculata guttata. NORTH (1889, S. 178; Victoria Naturalist 16, S. 10,
1899; 1902, S.48; s. HARTERT 1910, S. 486) beschreibt die Eier als glanzlos blaß-
grünlichgrau und zuweilen selbst bläulich getönt, mit Netzwerk wie bei der vorigen
Subspecies. MATHEws (Birds Australia 12, 1926, S. 325) fügt ein Zweiergelege von Ende
668 ; 29. Ordnung
1902 hinzu, das wie oft bei der Nominatform an beiden Polen nicht gezeichnet ist.
SERVENTY (1967, S. 419f.) nennt das Netzwerk hellbraun und findet außerdem dunkel-
braune gröbere Flecke. Zu seiner Angabe ‚‚etwas verlängerte Ovalform‘‘ paßt das hier
vernachlässigte Maß 32 x 26 mm nicht, da es k = 1,23 ergibt. — k = 1,55.
Chlamydera nuchalis nuchalis (?yorki) und orientalis. Nach CAMPBELL (1901, S. 203f.)
'soll die Zeichnung besonders bei westlichen Populationen mehr aus kurzen Stricheln
als aus langgezogenen Linien bestehen; doch fand sich bei den Stücken in Berlin,
Dresden, Tring und London kein Unterschied gegen die vorstehend geschilderten
Erscheinungen für Chlamydera und Ch. maculata. Der Grund war vereinzelt rahmweiß,
öfter blaß braungelb mit teils grauer, teils grüner Tönung, die Zeichnung auf den
hellsten Eiern gröber, dunkler und weniger dicht als auf den anderen. Aber auch auf
grünlichgrauem oder graugrünlichem Grund oft spärlicher gezeichnet, manchmal dichtere
Züge auch längsgerichtet, die dünnen mehr quer liegend und mit einigen Flecken
dazwischen, die zum Teil wie mittels eines Pinsels auseinander gezogene Kleckse er-
scheinen. [Die bei SCHÖNWETTER, Beitr. Fortpfl. biol. Vögel 20, S.7 und 17, 1944)
aus Point Keats (Nord-Territorium) der Nordwestform oweni Mathews des Großen
Kragenlaubenvogels zugeschriebenen Eier gehören nach der Verbreitung im PETERS
zur Nominatform. Hrsg.] — k = 1,43. (Taf. 12, Fig. 12.)
Chlamydera lauterbachi uniformis. Oval, blaß meergrün, dicht mit einem Netzwerk
brauner Kritzellinien und Striche sowohl in Quer- als in Längsrichtung gezeichnet,
wozu einige Flecke kommen (Raxp & GiLLIarD, Handbook of New Guinea birds,
London, Weidenfeld & Nicolson, 1967, S. 516; Gilliard 1969, S. 394). — k = 1,54.
Chlamydera cerviniventris. Abgesehen von dem meist grünlichen Hauch in der gelb-
lichen Grundfarbe das getreue Ebenbild von Sericulus, obwohl die Vögel nicht die
geringste Ähnlichkeit besitzen. Die Grundfarbe kann weißlich, grünlichweiß oder
blaßgrünlicholiv sein. Nehrkorns Exemplar ähnelt Fig. 5 auf der Tafel in SCHÖNWETTER
(1944), hat jedoch zum Teil viel dickere, ungleichmäßigere und mehr schwarzbraune
Adern auf graugelbem Grund, wie bei den Stücken der Museen Dresden und Tring.
Das im Britischen Museum ist mehr elfenbeinweiß mit grünem Ton, und auch NORTH
(1901, S. 58) gibt solche Grundfarbe an. Hätte Sericulus nicht eine andere Verbreitung,
würde man an eine Verwechslung denken können. Das Liniengewirr ist wie bei allen
Eiern dieser Gattung.
Einen als Synonym abgelehnten Namen dieser Art, Chlamydera recondita, gab MEYER
(Abh. Mus. Dresden 1894/95, Nr. 10, S.2, u. Tafel, 1895) dem allein vorliegenden Ei
des Dresdener Museums. Dieser Typ war aber schon 1929 nicht mehr vorhanden (MEISE,
Abh. Ber. Mus. Dresden 17, Nr. 4, S. 5, 1929).
HARRISON & FrıTH (Emu 70, S. 177, 1970) sahen auf einem Ei schwarze, graue
und purpurne Kritzel vor allem in der Gürtelzone. — k = 1,49.
669
Ptilonorhynchidae
Passeriformes
(wn«o4oswob "oong
. ATIAT: v / B A 66 -
ıy YYorojjpIA doyep) „saogjogyug“ IO
(„jowwRso9 HNSTOM UOA 9]]R)
BoumnaneN-OS
B9ummgnoN-g D9S-TqUunIARCT z/9 !pur
. N Di: h 6
(1oyoIs zuwd yyaru sormodsqng)
BOUMENON-S "N UJOSUf Navy
(0z67 1109
urwp[o) ‘purjsupend) 7/2 :199n01yN])
(LL6T 79-19 'S ‘8 parqung) auoy]
uoA yuuryaoun osseyf-Yaoa dep Se
“UÄS SUEHLELT T9q "yyem omunol pun
(31]99899 sagoumpoww qns
vwpurw UDULIOT g UOPU99[OF OIP HOLM)
puejsusond)-N
[guu9.1999 uno T AO4SYDBU UOA Yıy
DAPPUoRog Se yone (A) 99991 ("yger])
sıpıaa sopooınypy :NAMONMUHAN 10q|
purjsusond)-HS "SOTLMPNENON-O
(3- 1/2 :S1oqjoygyes oA AoIf])
(Iyang] -poomSur]oy
sIg oUBIqWEA) BOumSnoNn-N 'n uodep
(1/0 :#8E 'S ‘LOGT SIqL ‘Nosmig)
(Aqso1op] Jrogq Sıq
Jyongg-IeH UoA oysnyy-g) BoumsnoN-OS
Oak
/06 |
O/ y8
/oL'g
7)
%0'9
[0) ‘
09%
%6‘8
087
EI
91%
NAIUNTODUR (I PSZ "U "GIG MOIVHDS UOA Palm DUNTULLWMBS-TLIONIUO JOP UDULIO HJ UV!
“ 2 \ GoOS X 6 > . D \
-UUVCHIOUV yo YUyDTU yzyol [og wunz 9] UOA ya wwu "OLLUIR HT U9HPU9S[OF AP pun JOSOTP JOH] JOp (gaopung fewulo org‘) yyunyıorff 9IC] (1
(1XaL OyoIS)
910
9970
01
v1
(4x9, Oypıs)
r91°0
E90
GET‘0
8ET‘0
T0'T
08T
8'185
018
0°gF
967
or
(uoypeyyıo UIONayoN UoA “wnosnpr-Suru,) 7
(Surf, "sup “wunosnpr "YLrgL)
3.69°7—00°7 = ZTE 608 X E99 07H €
Kos!
snpydooounpow SWASOASSEDAD SRP9OoMmMy
(3767 ANnvy) 0°18% 0°0# :0°87%X 0°6€
(Arı9) syounppw suu50455D40 Snp9ommy %
[18617
"[jprıq ‘ONAIHATT 'L yaru zZ :LEL'S ‘OL6T
sSanvp yowu g ‘upopsoargg “urplogg “SULLT,
UOOHHN LONYPMUOUAS ‘(Sun weg 'z H[oyps
-NNf) UAoJIog Fern) “LOTOWolT ‘MONSOLT, "A
“su9ayagg “ULONIYUON Sunjuurg !c6T 'S
‘067 TITaanvı) :gL'S "TO6T HLUON yoeu]
3 67°1-F8‘0 = 868-195 X 7ER -0LE
Krsuneıg SNSOMIDUL S1501SSDW SMPaoınpy 8%
(wınos
NAT SOyposryraggp “TOyyomuoyag “UIoyIyoN
Zunpwures 596] 'S ‘T06T TIaaamvj) yoru)
3 99° —-00°T = 8'378 8'875 X 0'897 FOR
(noAug) Suqsoussmı0 sı4s0.4185n49 Snp9oanmy PI
[(299820,7)
yauagyngg "sn ‘(02 sOuye AM) Sutds,
"SH IOII9MUOYOS ‘(„UIONIYON Sunjwurrg]
3 06°0- 18°0 = 083998 X L’EF —2'86
19Aom wm4uosuojsıab sSopıoaang snpaoAnmy 9
(709 oystaM “wnosnyy "Jug)
odavyg muogs sopıoaang smpaoımmy |
EEE EEE EEE EN VEREESIELIEEE 202 |" VERRERRENE E0E 1E SEABER ERS) VEERPRIRESESEERR 1 FREIES EEE RE BR Eee VE Ve TE TE EEE
ay
x)
pP
8
EEE EN EEE EEE EEE EEE ET EEE | BRSSE SV: BRAUN | BERRRRERERERERE EEE VENBERNERVEIGEGENESR \ EBENEN SERIE SE CE Ge EEETEBEr
(1709 dawyg ‘7/0 3 :oUM)
(puejsusond)-N) PIIIH-SUNE)
(E- 1/2 : 18€ 'S ‘6967 auvITım)
in
(138 ‘7167 Tuıa A
yoweu F 'E6L 'S 'T0O6T TIdaanvg) yoeu)
L’6G—- 2 L3X HF -g°0F
pqdwey sourw snaonyora sny9uhyıouonyT ©
(Sutı], "Sn uIoyıyoN Sunjwurrg
:106] TITdanv/) !98 'S ‘TO6T HLAON ypeu)
3 091-917 = Z/IE-0'87 X 0°L9—E'7F
BIIOPIA SOTLMPnSNON ‘purjsusond-g | %4'9 OLTO 081 (A) snaonyora snaonyora snyauhyıouong]
(1867 "JPLIq ‘ONAIHAEL ’L yowu Z
yuuezaqun [yoA :09°S 'TO6T HINON :805 'S ‘TO6F TIaE
yosıd0j00 (IngSHJ-Bdung 'n -[eppeigl) -INVN) AOUIDF IONPAUOTIS “usjog Feind
purjsu9ond)-S UOA "UNE 2PIYISYI04 ‘Zur, SO uIoyayoN Sunpwweg yoru)
(1100 uely ‘9 7/2 :aodnoıy) 3 97°7—01'0 = 8'89— 8°75 X P°IP-E°FE
(od.urgan)-uosaoydoew) (IXOL, Pypıs) (urmorT)
er purjsusondy-g sıq sopeapnsnon-OS | %r'9 ıFT°0 680 snypydaoosh.uyd snpydaoosh.uy snmauagt
2) (umosnyy "ag 'n -SuLL], en)
2) (T 108ruom ‘Z/o) (IXAL OyPTS) 3 LL'O—69°0 = 398-095 X 0°98—-7'E8
4 (purjsusond)-N) PIIEH-suUme) | %T'9 EEIO 020 STA IT PUMUuogmau DAMPOUordT
® (OL6T ‘LLT'S ‘0, mug “BLU X
8 NOSIUUYH) 665 X 8°zF enge !(L'S
(1/9 : 9A aojuweg) (IXOL, PyDıs) ‘FF6T ANLLEIMNOHRAS) 8 09°T = L'8TX YI°OF
wumsnen-OS | (%9‘8) odıryg sıumppgns seuuohrqup
(1/2 :608 'S ‘6967 aUvITIM)
[(39[]yaS) snywu.oun (19PAMUoyag Fun]
910119 "SAW "LIU "LVO 'n NYOMMHAN] -uwmeg "Spy "Mag uIoyayoN Dunjwurg)
oangog) 3 00°1—36°0 = 368 —-0'87 X HE -Z‘0F
-Zinquoapurg StIq M BoumanoeN-OS | %c's seT‘o 16‘0 sta 91 awr.1obauboanım am4obaıbonu sausohjgup
(SB11g99)-usw
-wepur y SIq doyfodoAy) woumanon-MN
(z/2 gsrour :61% °8 ‘6967 AUVITIH)
(SBAGON-I9N USPUHIPT WOA AOL)
(A9AIY 9.199
(4x9, L Py21s)
([PFO]Y9S) sngwuoun sauaohjgup
(wınosnyy-Surı], WI dor] 9)
8 03°1—30°T = 968—-0°L3X 377 FOR
(Aesweyg) saasouguap sapaaodouaag 8
(812°0) | (o«‘r)
-7oH SIq gOIgan-sume)) purjsusony-ON | %29 | 08T | Ferro | 17°
670
671
Passeriformes: Ptilonorhynchidae
(31/2 :888 °8 ‘6967 AUvrTIH)
(Boumanon-M doyfp3oA) SOILL-ITIONM
sop YET) 'n BoumanaN-O “Areas
-SOLIOT, dOp ujosuf ‘psurgpepp-11oA des
(1/0 :paeıH) [TOO
down) gErgan-Susqusseg WOA TrL|
yıdog wmz sıq uotonT
yw 0 Weg NUurApoH) UOA WOUmaonoN
(6067 "II09 au] ‘z/D :193n0ay)
L(a)1/> :028 8 ‘6961 auvıruy]
UMOIOYANT SIQ M “UOMOEgL SIA
SLR) UOA Purjsusondy-N 527 myWor.ıo
UMOPTOON SIG S purjsusond)-N :?.10K
SAT
n gpusjArf 99004) ujosuf ‘mpg op
Up STQ O WNLIOYLOT-PION sUppyonu
(sduradgt 901 Yy Z/D :SsMoygem)
uorergseny-M (SPdsuur) pun -eayuoz
(g a081uoM ‘z/0)
(nopophumyyd =)
uoretsny-pnS
ur ARaınpy usaogun wınz YSRF, OTMOS
BLIOJOLA SIG Sn purjsusond) UOA KO1ouuT
(9XOL DIS)
0'87
0'067
07%
(OL6T ‘LAT 'S 0) NUN HLIUT X NOSINUVH -
yowu T ‘uaoyayon Junpwwrg “uopso.uc
‘Surf, 'SOnW “Sn "ag “6887 HLINON)
3 78T 107 = 185-398 X E39 9'7E
"pI9 sa quaanunaıa9 n.aphumyy) 8
(F6E 'S ‘6967 AUVITITH yoeu)
PIoSoyr sauniofvun vyongaopnny Bophummyd) T
(1867 "yoraq
‘ONAIHAMTT, "F YyorUu zZ ‘TOT9WOLT “UIONıyoN
Sunpwweg “uopsoag "Sn T "Sn "Mu z
‘un, SON ZI "TIaaanvg ypru wen)
3 89°I ZI T = G08-L'LEX SH —-Z'8E
"PIH S2joquarıo n (Sduruusp HD AAUy Wy4ohr, ‘)
(Agjps N "PAIR P) SIPYInU SUIDYINU »ophumyyd 07
(SMAHLYN pun HIYNON yaru)
697085 X 968 0°9€
'PIH Pomb pyppnomu Doaphumy) 8
(TITIaNVO 'n HINON yeu 'n “uopsoacn
SH "SH "asp “uaoyayoNn Sunjwurg)
3 90°T—98‘0 = 083 -0'93X 617-078
(pmoH) DIBINIDUN DIBINDIDUL DPD 94
672 29. Ordnung
Tafel 12
—_
Eier von Angehörigen der Familien Australien-Schlammnestkrähen, Schwalbenstare, Flötenwürger
einschließlich Würgerkrähen, Laubenvögel und Paradiesvögel
(Namen nach R. KREUGER, Maße nach und Aufnahmen von J. TERHIVUO aus dem Museum Oologiecum
R. Kreuger der Universität Helsinki, briefl. 1981; Maßstab etwa 1:1.)
Fig. 1. Grallina cyanoleuca (S. 646). Victoria. 28,8 x 20,4 = 0,357 g. (Weitere Eier dieses Geleges:
28,2 x 20,4 = 0,350 g; 30,8 x 20,5 = 0,353 g.) Collectio R. Kreuger 12956.
Fig. 2. Corcorax melanorhamphos (S. 646). Queensland. 38,9 x 28,3 = 1,195 g. (2. Ei dieses Geleges,
das ursprünglich 4 Eier enthielt: 38,9 x 28,0 = 1,181 g.) Collectio R. Kreuger 10220.
Fig. 3. Struthidea cinerea (S. 647). Queensland. 29,2 x 20,8 —= 0,428 g. (Weitere Eier dieses Geleges:
27,9 x 21,3 = 0,471 g; 29,9 x 21,5 = 0,470 g; 30,0 x 22,7 = 0,558 g.) Collectio R. Kreuger 10035.
Fig. 4. Artamus leucorhynchus humei (S. 650). Andamanen. 23,9 x 17,3 = 0,198 g. (2. Ei dieses
Geleges: 24,5 x 16,4 = 0,180 g.) Collectio R. Kreuger 5942.
Fig.5. Artamus superciliosus (S. 650). Victoria. 23,2 x 17,1 = 0,176g. (2. Ei dieses Geleges:
22,9 x 17,1 = 0,156 g.) Collectio R. Kreuger 10248.
Fig. 6. Cracticus mentalis kempi (S. 654). Queensland. 31,1 x 22,9 = 0,548 g. (Weitere Eier dieses
Geleges: 32,0 x 23,1 = 0,573 g; 32,2 x 22,5 = 0,525 g.) Collectio R. Kreuger 15357.
Fig. 7. Cracticus torquatus argenteus (S. 655). Roper River, N-Territorium (Australien). 28,9 x 22,1
—= 0,388 g. (Weitere Eier dieses Geleges: 28,9 x 21,4 = 0,360 g; 29,6 x 21,4 = 0,389 g.) Collectio
R. Kreuger 12972.
Fig. 8. @ymnorhina tibicen dorsalis (S. 657). Moora (W-Australien). 37,8 x 26,5 = 0,841 g. (Weitere
Eier dieses Geleges: 38,2 x 27,1 = 0,898 g; 38,4 x 26,7 = 0,921 g; 40,4 x 27,3 = 0,784 g.) Collectio
R. Kreuger 8373.
Fig. 9. Strepera versicolor howei (S. 658). NW-Victoria. 43,3 x 29,8 — 1,056 g. (2. Ei dieses Ge-
leges: 40,8 x 30,4 = 1,068 g.) Collectio R. Kreuger 15392. :
Fig. 10. Ailuroedus crassirostris maculosus (S. 665). N-Queensland. 41,3 x 29,0 = 1,155 g; (2. Ei”
dieses Geleges: 42,1 x 29,9 = 1,185 g.) Collectio R. Kreuger 10080.
Fig. 11. Sericulus c. chrysocephalus oder rothschildi (S. 666). Queensland. 41,0 x 28,0 = 1,157 g.
(2. Ei dieses Geleges: 41,4 x 28,8 = 1,155 g.) Collectio R. Kreuger 10079.
Fig. 12. Chlamydera nuchalis orientalis oder yorki (S. 668). N-Queensland. 40,2 x 28,4 = 1,216 g.
(2. Ei dieses Geleges: 38,2 x 28,0 = 1,120 g.) Collectio R. Kreuger 15148.
Fig. 13. Manucodia ater subalter (S. 680). Aru Inseln, Frost coll. 38,6 x 25,3 = 0,778 g. Collectio
R. Kreuger 10652.
Fig.14. Phonygammus keraudrenii jamesii (S. 681). Aru Inseln, Frost coll. 40,5 x 24,1 = 0,705 8.
Coll ectio R. Kreuger 10653.
Fig. 15. Paradisaea rubra (S. 688). Insel Batanta (Neuguinea), Frost coll. 38,0 x 22,6 —= 0,568 g.
Collecetio R. Kreuger 10651.
674 29. Ordnung
(1910), dann die von OGILVIE-GRANT (Taf. 3, Ibis 1912, zu S. 112—118) gebrachte
mit 8 Abbildungen von 6 Arten des Britischen Museums sowie 2 Tafeln von CAMPBELL
nach Eiern der Sammlung White (Emu 13, Taf. 11 und 13, Fig. 1—4, zu 8. 69— 74,
1913), nebenbei wohl auch die von JACKSON gegebenen Bilder (Emu 8, Taf. 24, 27,
32, 34, 35, zu S. 233—283, 1909; Emu 12, Taf. 9 u. 12 zu S. 65—104, 1912). Für jede
seiner 43 Formen, darunter 18 Laubenvögeln, weist SCHALOW das Schrifttum und die
Abbildungen im einzelnen nach und stellt im Einklang mit ganz ähnlichen, nur weniger
ausführlichen Verallgemeinerungen bei HArRTERT (1910) sechs Färbungstypen der
Lauben- und Paradiesvogeleier auf. Die Eier der Gattungen werden mehr generell, die
einiger Arten spezieller beschrieben; doch gibt er nur für 72 Eier von 37 Formen alt-
bekannte Maße an. Ich fand darunter nur 2 mir neue, aber 7 mit irreführenden Druck-
fehlern behaftete, da ungeprüft von HArTErT (1910) übernommene. Um mehr als die
Hälfte und um ein Viertel zu klein angegebene Querachsen bei Scenopoeetes und Para-
disaea minor minor verführten ScHALow zu dem irrigen Schluß (S. 287), daß diese
Formen zu denen mit geringster Breite gehören. Die Arbeit klingt aus in (so S. 268)
„Untersuchungen über die oologischen Beziehungen der Gattungen und Arten der
Familie zueinander wie über die oologische Stellung der Paradiseidae in dem syste-
matischen Aufbau der Klasse‘. Aus ihnen wird (S. 291—295) auf einen nur geringen
und sehr bedingten Wert der Oologie für die Systematik geschlossen.
Diese Meinung SCHALOWs und mancher anderer läßt sich wenigstens teilweise ent-
kräften, und er schränkt sie dann selbst nicht unwesentlich ein, indem er generische
Abtrennung auf Grund oologischer Merkmale nicht grundsätzlich ablehnt. Nicht
nur bei den phylogenetisch niedrig stehenden Vogelgruppen, wie SCHALOW (S. 294)
meint, zeigt sich ein eigener Eityp. Unter den 104 1944 anerkannten Familien der
Nonpassers sind 98 je für sich oologisch ganz einheitlich, von allen 165 Familien zu-
sammen immerhin 143. Die Entwicklung ist eben noch im Gang, und kein System wird
voll befriedigen.
Überdies scheint es uns gar nicht verwunderlich, wenn so stark voneinander ab-
weichende Vögel, wie wir sie in den Familien Ptilonorhynchidae und Paradisaeidae
sehen, recht verschiedene Eier legen, und wenn gelegentlich verschiedene Vögel ähnliche
haben. Denn wegen der bei allen Vogelarten im wesentlichen gleichen Organe und
gleichen Stoffe für die Erzeugung und Gestaltung der Färbung und Zeichnung der Eier
sowie infolge der weitgehend übereinstimmenden Verhältnisse im Uterus darfsicher ange-
nommen werden, daß an sich für alle Eier insgesamt dieselben Möglichkeiten hinsichtlich
der Färbung und Zeichnung bestehen, daß davon aber zuletzt nur eine bei den einzelnen
Familien, Gattungen, Arten und Unterarten dominant wird. Gründe oder Ursachen
lassen sich finden einmal in Veränderungen des Chemismus der Farbstoffe und in deren
verschiedener Löslichkeit, Kohäsion und Adhäsion, andererseits in Unterschieden der
Öberflächengestaltung in der Schleimhaut des Uterus. Offen bleibt dabei die Möglich-
keit feiner Längs- und Querfalten dieser Schleimhaut als Gestaltungsfaktoren und
Transportrinnen für das Pigment. Differenzierung der Vorgänge innerhalb der Art
wird die oft erstaunliche Färbungsvariation veranlassen können und die Ausbildung
auch individueller Typen, wenn nicht wirklich erklären, so wenigstens gut vorstellbar
machen. Ist doch die Entstehung der Zeichnung kein stereotyper Pigmentdruck, wie
früher geglaubt wurde, sondern ein dynamischer Vorgang. Dabei kann starke Kohäsion
bei geringer Löslichkeit des Farbstoffes scharf begrenzte Flecke erzeugen, bei Leicht-
löslichkeit dagegen ausgelaufene, umschattete Zeichnungen und selbst Tönung der
Grundfarbe, bei erheblicher Adhäsion zerrissene und teilweise gewischte Flecke.
Hinsichtlich oologischer Gesichtspunkte für die Einordnung der Lauben- und
Paradiesvögel in das System ist es nun freilich schlecht bestellt. Weit hergeholte Ver-
gleiche, wie zwischen Manucodia und den Rallidae, nützen da nichts, auch wenn die
Eier von Crex mit langgezogen gedachten Flecken denen der Paradisaea ähneln
Passeriformes: Paradisaeidae 675
oder die von Piprites chloris sich als überraschende vollkommene Miniaturen solcher
darstellen. Auch mit den für den Oologen naheligenden Beziehungen von Phonygammus
und Drepanornis zu den Meliphagidae wird die Systematik offenbar nichts anzufangen
wissen, so wenig wie mit der Andeutung in Richtung Oriolidae bei Onemophilus, die
zudem bei Ptilonorhynchus wiederkehrt. Die Dieruridae lassen sich m. E. kaum heran-
ziehen, aber mit den Corvidae und den ihnen wie die Paradisaeidae wohl nahestehenden
Gruppen steht es besser. Erythristische Eier der Corvidae (Corvus capensis, Cissilopha
sanblasiana yucatanica) kommen Phonygammus und Drepanornis ziemlich nahe, ent-
fernter selbst Paradisaea rudolphi. Callaeas, Corcorax und Calocitta lassen sich mit
Manucodia vergleichen, wenn man nicht hohe Ansprüche stellt. Aber damit sind
wir auch schon am Ende und müssen allerdings SCHALOW zustimmen, daß hier die
Oologie für die Systematik versagt, soweit diese auf die ganze Klasse abzielt. — Auf
oologische Beziehungen innerhalb der Familie kommen wir zurück.
Der mehrfach zitierten Arbeit von 1944 dienten als wesentliche Grundlage 223 Eier
der Ptilonorhynchidae und Paradisaeidae, die ich im Laufe der Jahre kennen lernen,
messen, wiegen und kritisch beurteilen konnte. Sie bilden in der beigesetzten Stückzahl
Kostbarkeiten folgender Museen und Privatsammlungen: Tring, jetzt vom British
Museum (Natural History) übernommen, aber in Tring stationiert: 96; London, vom
Britischen Museum inzwischen nach Tring überführt: 33; Berlin, Zoologisches Museum
der Humboldt-Universität: 29; Dresden, Staatl. Museum für Tierkunde: 16: Schön-
wetter, Gotha, jetzt Zool. Institut der Universität, Halle/Saale: 10; Senckenberg-
Museum, Frankfurt a. M.: 7: Domeier (jetzt Landesmuseum Hannover), Museum Koenig
(Bonn) und Stuttgart, Staatl. Museum für Naturkunde; je 6; Graf Seilern (Kuschels
2. Sammlung; fast ganz verloren): 5; Leiden, Rijksmuseum Nat. Hist., und Huhn:
je 3; Behrens (noch in Bad Harzburg?): 2; und Cordes, Hamburg (ausgebombt): 1.
Hinzu kamen Literaturangaben über weitere 160 Stück besonders in australischen,
aber auch englischen, finnischen, amerikanischen und papuanischen Sammlungen,
so daß nunmehr über 383 Eier in etwa 60 Arten und Unterarten berichtet werden
kann. Nur 6 von den 1944 beschriebenen 51 Formen, darunter 18 Ptilonorhynchidae,
waren Schönwetter nicht aus eigener Anschauung bekannt; sie sind in unserer Liste
am Fehlen der Schalengewichte kenntlich; aber die jüngsten Angaben aus Helsinki
enthalten auch Schalengewichte.
Seit 1952, als SCHÖNWETTER in den Sonderdruck von 1944 Änderungen und Zusätze
eintrug, kamen etwa 5 neue Arten und Unterarten sowie ein Gattungsbastard zur
oologischen Formenliste hinzu; einige fielen wegen Synonymisierung oder sonstiger
Feststellungen fort. Die Systematik stellt die 42 unten zu besprechenden Paradisaeiden-
formen in 15 Gattungen, bei denen nur der Laie sich wundert, daß in Körpergestaltung
und Färbung so grundverschiedene Vögel in einer oder jetzt zwei Familien zusammen-
gefaßt werden. Ist da, wie SCHALOW meint, die Oologie wirklich von so geringem Wert
hinsichtlich verbindender, gemeinsamer Gesichtspunkte? Kommt sie doch, von der
verschiedenen Grundfärbung abgesehen, schon mit den folgenden 3 Typen der Zeichnung
(ein vierter, nur den Laubenvögeln eigener, wird wiederholt) als den hier wesentlichen
Unterschieden der Eier aus:
Typ 1 (nur bei Ptilonorhynchidae vertreten, s. S. 663).
Typ 2 (auch bei Ptilonorhynchidae vertreten): Viele Gattungen: Kleine bis mittel-
große Flecke wie bei vielen anderen Familien gestaltet und verteilt: O’nemopkilus
(weiß mit schwarzbraunen Flecken im Ring); Macgregoria (bräunlichrosa, Flecke
braun und purpurschwarz); Lycocorax (ausnahmsweise rosagrau mit Flecken); Manu-
codia [weiß, auch gelb, grau oder rosa getönt, mit dunklen Flecken, selten einzelnen
Stricheln; M.jobiensis (hell rötlicher Grund); M. comrii (blaß braun- bis violettgrauer
Grund)]; Phonygammus (rosaweiß mit rötlichen und lilagrauen, verlängerten Strichen);
Drepanornis (Grund rosa bis rosagrau und lachsfarben, gleichmäßige Fleckenverteilung
43*
676 29. Ordnung
vorherrschend); Parotia 1. lawesii (hell rotbraun mit dunkelbraunen Flecken, nur 1 Ei
bekannt); Lophorina (rahmfarben bis hell gelbbraun, braun und grau marmoriert,
siehe auch Typ 4); unbekanntes Ei (weiß mit lilagrauen und rötlichgrauen Fleckchen).
Typ 3 (auch bei Ptilonorhynchidae): Vorwiegend in Richtung der Breitenachse
verlaufende Wirr- und Schlangenlinien: Lycocorax (rosagrau mit braunen Wirrlinien
oder auch Flecken, s. Typ 2).
Typ 4 (nicht bei Ptilonorhynchidae): Viele Gattungen»mit relativ ähnlichen Weib-
chen: Nur in Richtung der Längsachse verlaufende streifige, geflammte Wischer
auf rahmfarbenem bis bräunlich gelbem, zum Teil rosa getöntem Grund: Ptiloris
(Grund oft rot getönt, Streifen rotbraun und grau, aber P. paradiseus manchmal
nur mit kurzen Stricheln, P. magnificus nicht mit rot getöntem Grund, manchmal
mit langen Streifen bis über das spitze Ende hinweg) ; Seleucidis (rahmfarben mit kurzen,
meist bräunlichen Streifen); Epimachus (hell- bis zimtbrauner Grund, dunkle Längs-
wischer); Astrapia (blaß gelb- bis rosabraun, Längsstreifen auch purpurn); Lophorina
(rahmfarben bis hell gelbbraun, mit braunen und grauen Streifen, siehe auch unter
Typ 2); Parotia lawesii helenae (rahmfarben, braune und graue Längsstreifung, dazu
gefleckt, nur 1 Ei bekannt); Cicinnurus (rosarahmweiß mit dunklen Strichen ohne rote
Töne, nur 1 Ei bekannt); Diphyllodes (rahmfarben mit braunen und grauen Strichen,
ohne rote Töne); Paradisaea (rosa rahmfarben bis lachsrot, Längsstreifen braunrot,
braun und grau; P. rudolphi mit höchstens ganz wenig verlängerten Flecken).
Innerhalb der Gattung tritt also, soviel wir wissen, mit Ausnahme von Lophorina
und Parotia nur ein Typ auf. Die Einheitlichkeit der systematischen Stellung dieser
Vögel und ihrer Eier ist bei Typ 1 (nur Laubenvögel) und Typ 4 (nur Paradiesvögel)
vollständig. Sie wäre es auch bei Typ 3 ohne Zycocorax, der im System ziemlich am An-
fang der Paradiesvögel steht und dort sicher mit Manucodia und Phonygammus ver-
bunden ist, oologisch jedoch zu den Ptilonorhynchidae zählen müßte. Sehr verschie-
dene Arten beider Familien enthält der Typ 2, der sich, wie oben gesagt, nur auf
gleichen Zeichnungscharakter bezieht und deshalb noch allerlei Variation in der
Gesamterscheinung zuläßt. Statt aber daraus die Unzulänglichkeit oologischer Gesichts-
punkte herzuleiten, könnte man m. E. ebenso gut auf eine nähere als die bisher an-
genommene Verwandtschaft dieser Vögel schließen und die Zusammenfassung beider
Familien oologisch stützen, wenn auch nur nebenbei.
Als Grundfarbe findet sich weiß bei Manucodia, hell bis dunkler rahmfarben bei
manchen Ptiloris, rosagrau bei Lycocorax und einzelnen Manucodia, gelblich bis rosa
und selbst hell lachsrot bei Ptiloris und Paradisaea, hellbräunlich bei Parotia. Dichtere
Fleckung am stumpfen Ende herrscht bei Typ 2 vor, aber gleichmäßigere Verteilung
über die ganze Oberfläche bei Phonygammus und Drepanornis. Oft beginnen die Längs-
wischer des Typs 4 parallel begrenzt und sehr dunkel, werden dann heller und laufen
spitz und zerfasert aus. Manchmal erscheint die Aufhellung in umgekehrter Richtung;
doch handelt es sich da bei den dunklen Enden um nachträglich auf helle Streifen
abgelagertes Pigment, nicht um regelwidrige Verwischung. Bei den Eigentlichen
Paradiesvögeln treten zu den üblichen siena- und sepiabraunen sowie lilagrauen Flecken-
farben leuchtend rötliche Töne neben purpurgrauen, in verschiedenen Schattierungen.
Durch das Bohrloch betrachtet, zeigt sich die Innenfarbe bei Manucodia weiß, bei den
anderen Gattungen gelb bis orange.
Die Gestalt ist meist ein mäßig zugespitztes Oval, bei Lophorina gibt es stärkere
Zuspitzung an einem Ende. Oberfläche, Schalenglanz (der bei Lycocorax fehlt) und
Korn sind nicht anders als bei den Ptilonorhynchidae (S. 663). Wie bei diesen ist auch
hier die Schwankung der Eigröße gering: 27,5—45,6 mm für die Länge, 20,7—30,6 mm
für die Breite, 0,35 bis 1,18 g für das Schalengewicht. Die durchschnittlichen Frisch-
vollgewichte schwanken von 6,3—20,5g, woraus sich das Relative Schalengewicht mit
4,9— 6,3%, Das — 5,6%, , ergibt. Die Schalendicke ist also mit 0,10— 0,15, D,, = 0,126 mm,
Passeriformes: Paradisaeidae 677
relativ noch geringer als bei den Ptilonorhynchidae, so daß auch aus diesem Grunde
beim Berühren der wertvollen Objekte größte Vorsicht geboten ist.
Das Relative Eigewicht beläuft sich bei Verwertung der Gewichtsangaben von
HEINRoTH (1922, S. 221), HARTERT (Nov. Zool. 36, S. 33—39, 1930), GILLIARD &
LecroY (Bull. Amer. Mus. Nat. Hist. 123, S. 71, 1961), iid., ibidem 132, S. 270, 1966);
RırLey (Bull. Peabody Mus. Nat. Hist. 19, S.47 u. 50, 1964), DiamoxD (1972, S.
324—340), LONGMORE (Australian Museum, Sydney, briefl. 1980), LEcRoyY (Amer.
Mus. Nov. 2714, S,6—7, 1981) und Etiketten im Zoologischen Museum Hamburg
auf folgende Werte:
O-Gewicht Art RG O-Gewicht Art RG
ing 109, | nee: 20%
300 Paradisaea a. apoda 4,0 155 Astrapia rothschildi 8,7
225 Paradisaea apoda 151 Parotia I. lawesii 6,6
augustaevictoriae 5,4 140 Ptiloris magnificus
199 Manucodia a. ater vl intercedens 7,4
197 Manucodia chalybatus 6,8 131 Epimachus meyerv bloodi 11,8?
190 Paradisaea guilielmi 6,5 110 Drepanornis albertisi
166 Seleucidis melanoleuca geisleri 7,4
auripennis 8,8 97 Ptiloris paradıseus 10,1
161 Paradisaea minor finschi 8,4 78 Diphyllodes magnificus
160 Paradisaea m. minor 7,8 hunsteinv 11,0
158,2 Phonygammus keraudrenii 67,3 Lophorina superba latipennis 12,0
- Jamesii 6,7 55,5 Otcinnurus regius
156,5 Paradisaea rubra 6,8 (3 Rassen, Ei von 4.) 11,4
Die Paradiesvögel legen also relativ weniger schwere Eier als die Laubenvögel; 13
von 199 bis 110 g wiegende Formen benötigen i. D. 7,3%, des Gewichts für ein Ei gegen
bei den Laubenvögeln 11,8%, für 10 Formen, die von 210 bis 109 g wiegen. Bekräftigt
wird dieser enorme Unterschied durch die Feststellung, daß die Durchschnitts-Weibchen-
gewichte der 13 bzw. 10 Formen mit 159,6 bzw. 149,2 g wenig voneinander entfernt
sind. Diese Verschiedenheit im RG dürfte aber wohl nicht zur Stütze der nach DNA-
Hybridisierung gewonnenen Überzeugung von SIBLEY & Autguist (MS XVIII Congr.
Intern. Orn. Moskau 1982, S. 33—34) dienen, wonach die Ptilonorhynchidae als Familie
der Oberfamilie Menuroidea angehören (sic), die Paradisaeidae aber mit den Tribus
Corvini, Cractieini und Oriolini zur Unterfamilie Corvinae der Familie Corvidae in der
Oberfamilie Corvinoidea, womit sie weit auseinander rücken würden.
Wir kommen auf den gar nicht geringen Wert der Eier für die Systematik der
Paradiesvögel zurück. Die nach Dıamonp (1972, S. 305—348) vielleicht nur ober-
flächliche Ähnlichkeit zwischen Lycocorax und Manucodia ist auch oologisch vorhanden.
Beurteilen wir oologisch die Gattungsgruppen, die DramoxD in wesentlicher Überein-
stimmung mit Bock (Condor 65, S. 91—125, 1963) vergleicht und ähnlich findet, so
müssen wir doch einige Male widersprechen, aber im ganzen voll zustimmen. Manucodia
und Phonygammus, die eng beieinander stehen, gehören zu 2 verschiedenen oologischen
Gruppen, da Phonygammus mit seinen rot und kurz gestreiften Eiern schon zu Ver-
wechselungen mit Paradisaea Anlaß gab, übrigens — ist da ein Zusammenhang? —
öfter, als wir wissen, in die Nester der Paradisaea apoda-Gruppe legt. Auch die syste-
matische Gruppe Macgregoria, Lycocorax, Manucodia und Phonygammus, die GILLIARD
(1969, S. 41) in einen der 3 Stammbaumäste dieser Familie schreibt, beherbergt dem-
nach einen oologischen Abweichler. Das spricht nicht für den Einschluß von Phony-
678 29. Ordnung
gammus in die Gattung Manucodia, den Drıamoxp vorschlägt. — Epimachus und
Drepanornis, die einzigen Gattungen mit Bogenschnabel und auch sonst nebeneinander
stehend, gehören ebenfalls 2 verschiedenen oologischen Gruppen an, was wieder gegen
Vereinigung in der Gattung Epimachus (DıamoxD) spricht. Aber bei Cicinnurus und
Diphyllodes ist an der wirklichen Verwandtschaft auch oologisch nicht zu zweifeln.
Ptiloris, Lophorina und Parotia, die wegen sehr ähnlicher Morphologie der Weibchen
zusammengestellt werden, gehören oologisch in die Gruppe mit streifig gezeichneten
Eiern, wenn auch Lophorina zum Teil ausscheidet. In dieser Gruppe sind auch die
vorher genannten Cicinnurus und Diphyllodes unterzubringen. Diese 5 Gattungen,
denen sich Seleucidis und Astrapia, die morphologisch etwas ferner stehen, oologisch
leicht anreihen lassen, passen demnach gut zusammen. Wenn DramoxD sie schon
in die Gattung Lophorina zwingen will, sollte er sie mit Paradisaea (die fast immer
dicht bei Cicinnurus untergebracht wird), und unter diesem Linnaeus-Namen vereinen,
was ich aber nicht empfehlen kann. Ich bleibe lieber bei der bisherigen Trennung,
trotz Weibchen-Ähnlichkeit, Verbastardierung zwischen den Gattungen und auch trotz
der Oologie. Hrsg.)
Cnemophilus macgregorii macgregorii. A. S. Anthony, dem das Museum Tring eine
Anzahl eigenhändig im Owen Stanley-Gebirge SO-Neuguineas gesammelter Paradies-
vogeleier verschiedener Arten verdankt, schrieb dieser Art ein völlig dem des Pirols
(Oriolus oriolus) gleichendes, also ein weißes, vor allem in einem Ring um das stumpfe
Ende braunschwarz geflecktes Ei mit grauen Unterflecken zu, das er in einem dicken
Moosnest fand. HARTERT (1910, S. 487) hielt es für falsch bestimmt, als „vollkommen
unähnlich allen bisher bekannten Eiern der Paradiesvögel‘‘, und weil auch deren
Nester gänzlich anders seien. Die Verschiedenheit der bekannten Eier in dieser Familie
ist aber so stark, daß man noch auf allerlei Überraschungen gefaßt sein kann. Das
fragliche Ei könnte also vielleicht doch richtig sein, zumal ein vor allem aus Moos
gebautes Kugelnest des Furchenvogels mit seitlichem Eingang von LokE WA THo
(1957, S. 104) photographiert worden ist und GILLIARD (1969, S. 88f.) sich sehr für
seine Echtheit eingesetzt hat. Allerdings könnte das Nest auch nur in eine Mooshöhle
eingebaut worden sein (LECRoOY 1981, S. 2).
Manche Manucodia-Eier besitzen ja auch nur schwarze Flecke auf weißem Grund
wie Oriolus oriolus, und über die Nistweise sind wir immer noch unzureichend unter-
richtet. wenngleich feststeht, daß die meisten Arten offene, nicht sehr ordentlich
wirkende Nester bauen. — k = 1,58.
Macgregoria pulchra carolinae. Bräunlichrosa mit spärlichen hell braunen und über-
lagernden purpurschwarzen Flecken, die überall stehen, aber mehr am stumpfen
und weniger gehäuft auch am spitzen Ende. Kleine Unregelmäßigkeiten auf der wenig
glänzenden Schale bewirken eine geringe Rauheit. Rap fand das Ei des Brillenparadies-
vogels in einem massigen Zweig- und Moosnest (Amer. Mus. Nov. 1073, S. 2, 1940). —
k = 1,42.
Lycocorax pyrrhopterus obiensis. Sehr eigentümliche Eier, gänzlich verschieden
von denen aller anderen Paradisaeidae, aber auch ohne Anklang an solche der Raben-
vögel (Corvidae), zu denen diese Paradieskrähe anfänglich gestellt wurde. Nur zwei
gänzlich glanzlose Eier sind bekannt. Das in der Sammlung Nehrkorn trägt am stumpfen
Ende auf der hellrosagrauen Grundfläche einen schwachen Kappenkranz aus fast
haardünnen, braunen Wirrlinien, wie solche bei Emberiza citrinella häufig sind. Unter-
flecke fehlen. Nach ScHarLow (1915, S. 285) erhielt es Nehrkorn aus der Handlung
von H. Rolle als von Straßen gesammelt, nach meiner Erinnerung durch Tausch aus
dem Museum Leiden. Das dortige, von Bernstein 1865 auf Obi lattoe gefunden, hat die
gleiche Grundfärbung, aber nur vereinzelte, undeutliche Fleckchen, keine Haarlinien,
Passeriformes: Paradisaeidae 679
keine Kritzel. Unter Eiern der Phragamaticola aedon findet man beide Typen in Grund-
färbung und Zeichnung wieder.
Eine Einordnung in die Chlamydera-Gruppe der Ptilonorhynchidae läßt sich durch
die bei beiden vorhandenen Haarlinien einigermaßen begründen. Denn so spärliche
Zeichnung beschreibt CAMPBELL auch bei drei von zwölf Gelegen der C'hlamydera m.
‚'maculata, von denen zwei nur geringes Netzwerk am stumpfen Ende hatten, eines
gar nur wenige, kaum angedeutete helle Linien aufwies. — k = 1,41.
Lycocorax pyrrhopterus pyrrhopterus. Auf glanzlos rosagrauem Grund stehen bei
dem einzigen Ei des Leidener Museums einige braune Haarlinien unregelmäßig und
lose verteilt. Es wurde von Bernstein 1862 in Gilolo auf Halmahera gesammelt. Zwei
weitere rosagraue fand PARKER in der Nestersammlung des Britischen Museums
(Bull. Brit. Orn. Club 83, S. 126f., 1963); sie sind aber überall spärlich mit violett-
grauen Linien und blaß lila Haarlinien gezeichnet. Beide tragen schwache orangefarbene
Holzmulmflecke, die PARKER auf feuchten Holzmulm im Wurzel-Moos-Nest zurück-
führt. — k = 1,42.
Manucodia. Wieder einen gänzlich anderen Zeichnungstyp weisen die Eier der
Manucodia-Arten auf. Ihr immer heller, vorwiegend weißer, nur mäßig glänzender
Grund ist mit beinahe schwarzen, rundlichen oder braunen und grauen, etwas ver-
wischten Flecken besetzt, die lose gemischt sind oder sich überdecken und weitläufig
unregelmäßig verteilt oder am dicken Ende dichter stehen. Manche Eier erinnern
an Ralleneier (Rallidae), andere eher an den Charakter derer von Pitta, Oolluricincla
und Calocitta. Trotz des im ganzen einheitlichen Typs, der jede Ähnlichkeit mit anderen
der Familie vermissen läßt, ist die Variation in der Gesamterscheinung so groß, daß
fast kein Ei dem anderen gleicht.
Das Korn ist zart und überall feinst gestrichelt, die durchscheinende Farbe weiß
bis gelblich. Nur ein Teil der vielen seichten Grübchen in der Oberfläche enthält Poren.
Nicht artlich verschieden ist die mehr oder weniger einseitig verjüngte Gestalt, die
vom ziemlich spitzen Oval bis zur breiten Ellipse schwankt. Die Grundfarbe kann
weiß und ohne gelbe oder graue Tönung sein, gelegentlich auch blaßrosagrau. Die
Flecke sind auf einigen Eiern nur klein bis mittelgroß, scharf umgrenzt und dunkel,
gleichmäßig verteilt, bei anderen mehr am stumpfen Ende und dann vereinzelt größer
und von helleren braunen und grauen Schatten umgeben. Blaß lilagraue Unterflecke,
teils wie die übrigen mit deutlichen Rändern, teils leicht gewischt, fehlen nie. SCHALOW
(1915, S. 290) erwähnt manchmal zu findende, „ganz vereinzelte verschwindende
grauliche zarte Schnörkelstriche‘‘. Immer bleibt der bei weitem größte Teil der Ober-
fläche unbedeckt.
Manucodia ater ater. Nehrkorns Stücke haben auf graugelblichweißem Grund fast
gleichmäßig verteilte, ziemlich große und scharf umgrenzte, schwarze und schwarz-
braune Oberflecke, mattgraue bis blaugraue Unterflecke und einzelne dunkle Haar-
linien, die auch bei anderen gelegentlich auftreten. Maße: 37,5 x 26,5 — 0,72 g und
39,0x 26,4 — 0,72 g. Das Exemplar in Tring ist rahmfarben mit wenigen mäßig großen,
braunen Flecken. Es mißt 41,4 x 27,2 = 0,96 9. Ähnlich das meine, weiß mit verein-
zelten großen, braun umschatteten, fast schwarzen Flecken neben kleineren eben-
solchen, gemischt mit deutlichen lilagrauen Unterflecken, beschränkt auf das obere
Eidrittel, im übrigen noch viele winzige Punkte auf nur einer Seite des nur wenig
schlankeren Endes. Maße: 37,0 x 27,2 = 0,80 g. Das zu kleine „M. ater“-Ei in Dresden
von der Astrolabe-Bucht,- graurosa mit runden schwarzen Punkten (33,2 x 23,9
— 0,52 g; k = 1,39) halte ich wegen Größe und Färbung für Pitohui ferrugineus clarus
(vgl. M. jobiensis). Zwei von RAnD (Amer. Mus. Nov. 993, S. 3, 1938) gefundene Eier
der Glanzmanucodia sind ziemlich glatt und wenig glänzend, weißlich, eins überall
schwärzlichbraun gepunktet und gefleckt, mit vielen blaß purpurgrauen Flecken
680 29. Ordnung‘
und mit gelbbraunen dazwischen, so daß ein schmutziges Aussehen resultiert; das
zweite schwerer, aber mit helleren Flecken gezeichnet, die zur Strichform tendieren,
besonders am stumpfen Ende. — k = 1,46.
Manucodia ater subalter. Le Sov£r (Ibis 1900, S. 613) beschreibt 2 Eier als purpur-
weiß, mehr oder weniger bedeckt mit kleinen, schwärzlichen Spritzern, wenigen grö-
ßeren Flecken dunkel purpurbrauner Farbe und einzelnen helleren Blattern sowie
blaßpurpurnen Unterflecken. Maße rund 38x 26 mm, wobei die Breitenmaße 1,4
und 1,3 in 1,04 und 1,03inches verändert wurden. Das eine in Tring (41,1 x 27,5
— 1,04g) trägt auf weißem Grund wenig dichte, rundliche Kleckse schwarzbrauner
Farbe und verschiedener Größe, daneben ebensoviele blaßgraue als gewischte Unter-
flecke nebst einigen verloschenen Kritzeln und Stricheln; alle stehen ziemlich locker.
Das zweite gleicht mehr einem weißgrundigen Rallus-Ei und mißt 42,4 x 29,4 — 0,88 g.
(Ralleneier dieser. Größe wiegen etwa 1,50 g.) Weitere dort messen 38,0 x 28,1 — 0,85 g
und 38,0 x 27,1 = 0,81. Sie bilden ein Gelege von der Insel Sariba vor SO-Neuguinea.
Ähnlich dem oben zuerst beschriebenen in Tring erscheinen das der Sammlung Kreuger
im Zoologischen Museum Helsinki und das des Britischen Museums mit schokoladen-
braunen und grauen, etwas längs gewischten Flecken auf weißlichem Grund, die vor-
wiegend auf das dickere Ende beschränkt und nur da einigermaßen dicht stehen,
dazu auf dem von Frost gesammelten Londoner Ei verloschene Kritzel (dessen Maße:
40,0 x 25,4 = 0,73 g). Von dem im Car. Bert. Mus. (1912, S. 450) erwähnten blaß-
fleischfarbenen Ton der Grundfarbe war nichts mehr zu sehen. Das im Dresdener Museum
offenbar irrig zu Phonygammus keraudrenii jamesii gestellte, langovale Ei von weißem
Grund mit braunen und grauen Flecken (39,6 x 24,8 = 0,75 g) vom Aroa-Fluß halte
ich für ein schmales der M. a. subalter, da es ganz von deren Charakter ist. — k = 1,48,
(Taf. 12, Fig. 13.)
Manucodia jobiensis rubiensis. Das Britische Museum besitzt zwei dieser Art zu-
geschriebene Eier vom Mimikafluß in SW-Neuguinea, die €. H. B. Grant sammelte
(OGILVIE-GRANT, Ibis 1915, Suppl., S.7; Cat. Brit. Mus. 1912, S. 450). Sie tragen
hellgraurosa Grund, der ins Hellkupferrötliche zieht, am breiten Ende einen unbe-
stimmten Kranz feiner rotbrauner und lilagrauer Flecke und sind sonst nur spärlich
gezeichnet. 32,1 x 24,6 — 0,55 g und 31,5 x 24,5 = 0,53 g. Hierher gehört m. E. auch
das im gleichen Museum 1934 als Paradisaea raggiana liegend gesehene, gleichfalls
vom Mimikafluß (Og.-GRANT 1915, S. 9, Grant fand 2 Eier). Es hat auf graurötlichem
Grund rundliche dunkelgraue und schwarze Flecke, ähnlich den Eiern von Pitohui,
einem Museicapiden, und mißt 34,4 x 24,1 = 0,58 g (k = 1,34).
Bei diesem Ei lagen, ebenfalls irrig als Paradisaea raggiana, vier weitere des gleichen
Typs mit graurotem Grund, aber aus SO-Neuguinea, die man geradezu für Pitohui
ferrugineus clarus halten möchte, von welcher Art C. Wahnes ebensolche Eier brachte,
die denen von Pitohui ferrugineus leucorhynchus, von Platen auf Waigeu gesammelt,
völlig gleichkommen. Aber auch als Manucodia chalybatus orientalis kamen derartige
Stücke durch Wahnes in die Nehrkorn-Sammlung, so daß die Frage offen bleibt, wie
diese Widersprüche sich lösen lassen. Die Maße der fraglichen Stücke sind: 36,1 x 23,2
—0,56g und 36,0x23,1=0,#5g (k= 1,56 und 1,55), Owen Stanley-Gebirge;
35,7 x 23,0 = 0,85 g und 40,0 x 23,4 — 0,85g (k = 1,55 und 1,71, abnorm gestreckt),
SO-Neuguinea (E. Weiske). Für unsere Liste wurden sie nicht verwertet. — k = 1,34.
Manucodia chalybatus. Alle gesehenen, fast durchweg von C. Wahnes am Sattelberg
gesammelten Grünmanucodia-Eier weisen unter sich erheblich verschiedene Zeich-
nungen auf. Man findet auf dem rein- oder rahmweißen, gelegentlich isabell oder grau
gehauchten Grund entweder überall nur winzige helle Punkte und kleine Fleckchen,
die abgewaschen wirken, oder gröbere dunkle Blattern am breiten Ende, die manchmal
Passeriformes: Paradisaeidae 681
rundlich, aber auch unregelmäßig gestaltet oder ein wenig in die Länge gezogen sind,
wobei jeder Typ für sich allein und auch in Mischung vorkommt. Vorwiegend ist die
Zeichnung nur lose, wenig dicht, und die Fleckenfarben sind dunkelsepia, hellbraun
und lilagrau. In einzelnen Fällen standen rundliche, ziemlich gleichmäßig verteilte,
mittelgroße Flecke, schwärzliche und graue, auf der ganzen Oberfläche und über-
deckten sich zum Teil. Ein Typ kommt Corcorax sehr nahe, ein weiterer wurde bei
M. jobiensis (S. 680) erwähnt. — Sehr abweichend erwies sich ein Gelege auffallend
kleiner Bier in der Schausammlung des Museums Stuttgart (32,8 x 21,7 = 0,44 g
und 32,7 x 22,2 — 0,45 g) mit recht dichter, hellolivbrauner Zeichnung in Form gleich-
mäßig verteilter, mehr zusammenhängender Kritzelflecke in Längsrichtung, gesammelt
von Holderer am Sattelberg. Es sieht wie abgewaschen aus. Da es in Größe und Färbung
aus dem Rahmen der Manucodia-Eier ganz herausfällt und offenbar falsch bestimmt
ist, blieb esin unserer Liste unberücksichtigt. Es könnte zu Lophorina superba latipennis
gehören! — Wiederholt waren auf demselben Ei die Oberflecke rundlich, die Unter-
flecke gewischt, woraus sich schließen läßt, daß während der Kalkschalenbildung
das Ei sich im Uterus nur anfänglich bewegt, später nicht mehr. — k = 1,33.
Manucodia comrii comrii und’ trobriandi. Auch die Kräuselmanucodia, die größte Art
ihrer Gattung, legt ihre Eier in ein wie bei Oriolus geformtes Astgabelnest. Das Ei zeigt
aber nicht, wie das von M. jobiensis, weißen, sondern blaß braungelben, nach HARTERTS
Beschreibung der frischen Eier (Nov. Zool. 3, S. 234, 1896) sogar bräunlich lachs-
farbenen — wovon die Abbildung nichts zeigt — Grund mit dunkelbraunen und helleren
rotbraunen, nach RAnD & GILLIARD (1967, S. 466) sogar zimtfarbenen Ober- und grauen
oder blaß violettbraunen Unterflecken, die hauptsächlich am oberen Eidrittel, sonst
nur ganz vereinzelt stehen. Abgesehen von der dunkleren Grundfarbe ist der Zeich-
nungscharakter wie bei den anderen Manucodia-Arten auch, also vorwiegend dunkle
Blattern, die mehr oder weniger lose am dicken Ende erscheinen. Insbesondere erinnern
die M. comrii-Eier sowohl an manche Ptilonorhynchus, als auch an Porphyrio und
Larus, wenngleich nur entfernt [vgl. die entsprechenden Abbildungen bei HARTERT
(1910, Taf. 10, Fig. 11) und CAmPrgeur (1901, Taf. 9 und 11)]. — Wenigstens eins der
Eier von M. c. trobriandi hat blaß violettgrauen Grund. — k = 1,47 bzw. 1,46.
Phonygammus keraudrenii jamesiti. Ein offenes flaches Nest in einer Astgabel enthält
die wie anscheinend alle Schalldrosseleier an die immer rot gefleckten von Corvus
capensis erinnernden Eier. Auf rosaweißem Grund besteht nämlich die rötliche und lila-
graue Zeichnung nicht aus langen Strahlen, sondern aus kurzen Fleckchen und Stricheln.
Diese verlaufen in deutlicher Längsrichtung und sind meist gleichmäßig über die ganze
Oberfläche verteilt mit nur geringer Verdichtung und Vergrößerung nahe dem stumpfen
Pol. Sie können scharf umgrenzt, aber auch leicht verwischt sein, von schön kastanien-
brauner oder noch mehr roter und von purpurgrauer Farbe, mehr oder weniger dicht,
klein bis zur Punktgestalt, auf demselben Ei aber auch bis 4 mm lang und 1 mm breit,
selten darüber und vielleicht nur dann, wenn braune und graue aneinander liegen oder
sich teilweise überdecken. Das erhöht die Schönheit, besonders, wenn auch die Unter-
flecke dunkel sind. Trotz manchmal dichter Zeichnung bleibt wegen der Kleinheit der
Flecke der größte Teil der glänzenden Oberfläche zwischen diesen frei. Als Gestalt
- herrscht ein etwas gestrecktes Oval vor.
Das recht flache Korn zeigt unter der Lupe unregelmäßig geformte, glänzende
Erhebungen neben matten, ebenfalls flächenhaften Senken, in denen hier und da stich-
förmige, teils kraterartige Poren liegen. Durchscheinende Farbe leuchtend gelb bis zart
rosa gehaucht. Im ganzen dürften diese Angaben für alle drei Formen gelten, die auch
einige Ähnlichkeit mit manchen Meliphagiden-Eiern besitzen. Ein Stück im Britischen
Museum erinnert an Philemon cockerelli, mißt 32,1 x 23,2 = 0,52 g und ist weniger
682 29. Ordnung
dicht gezeichnet. Drei in Tring, dabei ein sehr großes, messen 32,4 x 23,1 = 0,54 und
33,0 x 23,1 = 0,52 und 39,1 x 26,8 = 0,80 g. Die Mittellung von Ror#scHiLD (Bull.
Brit. Orn. Club 51, S. 9, 1930), wonach Frost eins der Tring-Eier in einem Nest von
Paradisaea apoda gefunden und Phonygammus bei Weibchen und Jungen gesehen
habe, ist erst kürzlich bestätigt worden, wenn auch nicht die Angabe von Frost, daß sich
die Schalldrossel wie ein Cuculide verhält und in Brutparasitismus leben könnte (s.
nächste Unterart). — k = 1,47. (Taf. 12, Fig. 14.)
Phonygammus keraudrenii purpureoviolaceus. Nehrkorns Exemplar zeigt eine mehr
hellrosagraue Grundfarbe und rostbräunliche bis sehr dunkle, fast schwarze Fleckchen
neben violettgrauen. Zwei in Tring und das meine haben rosarahmfarbenen Grund mit
dort verwischten, hier scharf umrissenen Stricheln und Fleckchen in Rot- und Kastanien-
braun sowie Lila, alle hell und dunkel nebeneinander, aber ohne schwärzlichen Ton, der
wohl überhaupt nur eine Ausnahme darstellt. Mehr fuchsig ist der auch sonst ab-
weichende Gesamteindruck des einen von Weiske im Britischen Museum, das dichtere,
verwischte, vorherrschend braune Ober- und zurücktretende, graue Unterflecke trägt.
Bei einem zweiten dort aus derselben Quelle überwiegen die grauen Unterflecke gegen-
über den hellkastanienbraunen Oberflecken auf rosarahmfarbenem Grund; daher ist der
Gesamteindruck rosa. Das von Barton stammende dritte erscheint rötlich lachsfarben
mit einer Zeichnung gleich der auf dem meinen, die wie bei den meisten annähernd
gleichmäßig überall verteilt ist. Ein weiteres Ei in Tring stammt aus der Sammlung
Munn und aus der Gefangenschaft — ob von Aru oder SO-Neuguinea? Es ist ganz
ebenso wie die dortigen jamesii-Eier und mißt 34,0 x 25,0 — 0,51 g, gehört nach dem
Vogel aber eher zur Form purpureoviolaceus (damals jamesii genannt), wie mir HARTERT
sagte, und wird nicht in die Liste übernommen. Das oben erwähnte fuchsige Ei ist mit
36,7% 26,0 — 0,77 g das größte und schwerste und könnte fast Paradisaea raggiana
sein. Die übrigen wiegen nur 0,58—0,68 g. — Ein in Dresden als Phonygammus jamesii
liegendes Stück ist bei Manucodia ater subalter (S. 680) beschrieben, wofür ich es halte.
[Harrıson & FRITH (Emu 70, S. 176f., 1970) beschreiben 2 von Mayer gesammelte
(Gelege des Britischen Museums sehr ähnlich und heben bei einem Ei die starke Längs-
richtung der Flecke wie bei Paradisaea-Eiern hervor, wogegen vom 2. Ei keine Streifung
und vom 2. Gelege nur eine geringe erwähnt wird. — Ein Ei dieses gelegentlichen
Fremdnestbenutzers entstammt nämlich einem Nest von Peneothello cyanus; es wurde
zunächst von HARRISoNX (Emu 71, S. 85f., 1971) Eudynamys „‚scolopaceus“ zugeschrieben
und mißt 38,0 x 24,9 mm. Das umbenannte Ei und das Ei unbekannter Herkunft des
Tring-Museums, das wohl auch Schönwetter entging und 39,4 x 25,7 mm mißt (über
beide s. HARRISON & WALTERS, Emu 73, S. 189, 1973) bleiben unserer Liste fern (s.
unten Ph. k. neumanni, S. 682). Hsg.] — k = 1,44.
Phonygammus keraudrenii neumanni. Wie andere Eier dieser Art sehen 3 Eier aus, die
HARRISON & WALTERS (1973, S. 189) aus dem Britischen Museum beschreiben, die für
Mayer gesammelt, aber nicht ausdrücklich als Paradisaea raggiana beschriftet wurden.
Immerhin wurde gemeldet, daß mehrere Nester dieser Art je ein Ei enthielten, worin
wohl mit Recht eine Bestätigung der oben bei Ph. k. jamesii behandelten Fremdnest-
benutzung gesehen wird. Die Eier sind nelkenrötlich und dicht (ein blasseres Stück
weniger dicht) purpurfarbig und rötlichbraun gestreift. — k = 1,46.
Phonygammus keraudrenii gouldi. Die Eier dieser nordaustralischen Unterart, die mir
nicht zu Gesicht gekommen sind, haben wir uns nach den Beschreibungen bei LE SoUEF
(Ibis 1898, S. 53) und CAmPpgELL (1901, S. 78) ganz wie die vorigen vorzustellen, die
Grundfarbe vielleicht etwas mehr rot, so nach MATHeEws (1926, S. 385) purpurrosa. Eine
Abbildung bei CAmpBELr (Emu 13, Taf. 13, Fig. 1, bei S. 70, 1913) zeigt Fleckenarmut
am schmaleren Ende. — k = 1,42.
Passeriformes: Paradisaeidae 683
Ptiloris bis Paradisaea. Die Eier der nachfolgenden Arten ohne Drepanornis und
einen Teil der Lophorina- und Parotia-Eier besitzen alle den gleichen Zeichnungs-
charakter. Er ist auf meist stark glänzendem, rahmfarbenem bis bräunlichgelbem, zum
Teil rosa getöntem Grund dadurch scharf ausgeprägt, daß sich in Richtung von Pol zu
Pol bis 3 mm breite, 15—30 mm lange, oft leuchtend rote oder rotbraune und graue,
flammige Fleckenstreifen verschiedener Tönung und Dichte gerade oder gebogen
hinziehen. Sie wirken zum Teil wie abgeschattet, beginnen nicht selten dunkel, werden
dann heller und laufen spitz aus. Manchmal sind sie auch parallel begrenzt und in der
ganzen Länge schnurgerade wie mit dem Lineal gezogen. Dazwischen stehen kleinere
Spritzer derselben Farben. Weil offenbar die Variation auch innerhalb der Art erheblich
ist, sind die ziemlich gleichgsroßen Eier verschiedener Species nicht immer sicher unter-
scheidbar, wenigstens solange nicht, bis einmal mehr Material von diesen seltenen
Eiern bekannt sein wird; sie liegen bisher oft nur in einem oder zwei Exemplaren vor,
deren Eigenheiten vielleicht nur individuell sind.
Die meistens durch ein prachtvolles Gefieder und absonderliche Balzgewohnheiten
von den relativ viel weniger verschiedenen, ja von Art zu Art manchmal verwechselbaren
Weibchen stark abweichenden Männchen dieser Paradiesvogelgruppe leben, soviel
bekannt, in Vielweiberei, die vorher betrachteten monogam. Bis auf Cicinnurus legen
die Weibchen in mehr oder weniger flache offene Napfnester. Bei den sicher polygyn
lebenden Gattungen Semioptera, Astrapia, Parotia und Paradisaea (wohl außer P.
rudolphi) ziehen die gesellis balzenden Männchen die Weibchen an, und da kommt
(oft oder immer?) Polyandrie [besser gesagt, Promiskuität oder noch eher Keinehe,
Hrsg.] vor; bei den übrigen folgenden Gattungen sind die Eheverhältnisse noch nicht
eindeutig bekannt (Lecroy 1981, S. 3—4).
Ptiloris paradiseus (= Craspedophora). Hübsch glänzende, oft sehr lebhaft gefärbte
Eier. Meist rötlich rahmfarbener oder etwas mehr bräunlicher Grund. Nicht immer
sehr lange und dichte Streifung, manchmal nur kurze Strichel in roten, rötlich kastanien-
braunen, purpurroten und purpurgrauen Tönen von ganz hervorragender Schönheit.
LE SouEr berichtet von einer Vorliebe der Ptxloris für abgestreifte Schlangenhaut, die
wiederholt außen um das Nest gewunden wird, wie ein gutes Lichtbild bei CAMPBELL
(1901, S. 69) zeigt. Anscheinend kein Ei in europäischen Sammlungen. — k = 1,43.
Ptiloris victoriae (— C'raspedophora). Grund rötlich fleischfarben. Zeichnung prachtvoll
leuchtend rot, rötlich violett und purpurgrau. So unter anderen vier Stücke in Ting,
daneben zwei mit mehr rahmgelbem Grund. — k = 1,38.
Ptiloris magnificus intercedens (= Craspedophora). Grund bei drei Eiern des Pracht-
paradiesvogels im Britischen Museum rahmfarben bis hellbräunlich, bei vier in Tring
sowie je einem in der Sammlung Cordes und in der meinen rahmgelb, bei zwei weiteren
in Tring hellgraubräunlich. Wischer und Streifenflecke braun und grau, manchmal recht
lang, fast geradlinig, einmal selbst noch um das spitze Ende herum (vgl. Paradisaea
apoda augustaevictoriae, S. 687). Keine roten Töne, mehr fahle. — k = 1,41.
Ptiloris magnificus alberti (= Craspedophora). Oft sehr helle Grundfarbe, rahmfarben
ohne rötliche Tönung. Gelegentlich aber auch etwas dunkler, so bei Nehrkorn, blaß im
Britischen Museum. Flecke nicht selten minder lang gestreckt und weniger dicht, hell-
olivbraun, dunkelsepia und grau. Die Enden häufig fleckenfrei. — k = 1,41.
Seleucidis melanoleuca melanoleuca und auripennis (= Seleucides). Beim Fadenhopf,
wie bei den vorigen, haben wir wieder den Typ 4 der Lauben- und Paradiesvogeleier vor
uns, der hier in den bisher bekannt gewordenen wenigen Exemplaren aber zarter und
heller ausgeprägt ist. Auf rahmfarbenem Grund strahlen vom unbedeckten Pol am
stumpfen Ende meist nur 1cm lange und kürzere, 1 mm breite, verloschen purpur-
684 29. Ordnung
braune und graue Wischer, die sich nach unten zuspitzen, wo die übrige Fläche nur ver-
einzelte Spritzer trägt, alles ohne ausgesprochen rötliche Töne. Es ist in Tring das
hellste der vergleichbaren Eier, aber vielleicht nur individuell. Das 2., von GILLIARD in
einem flachen Napfnest am Sepik gefundene Ei wird ebenso beschrieben (1969, S. 130).
— k = 1,4.
Paradigalla (carunculata) brevicauda. Nach OÖGILVIE-GRANT & WITHERBY (Bull. Brit.
Orn. Club 31, S. 104, 1913) sammelte die Wollaston-Kloss-Expedition ein Ei, über das
ÖGILVIE-GRANT (1915) nichts berichtet: es war ein Nest. Ei also unbekannt.
Drepanornis albertisi geisleri. Im flachen Astgabelnest des Gelbschwanzsichelhopfes
liegen Eier ganz anderen Typs, nicht wie die von Ptiloris und Paradisaea, sondern mehr
wie manche von Meliphagidae. Sie nähern sich dagegen Phonygammus wie auch die der
folgenden Form. Auf rosa Grund sind die beiden einzigen Eier (Tring) über und über
mit lebhaft rötlichbraunen und grauen Flecken besetzt, die zwar ein wenig längs ge-
richtet, aber nicht lang ausgezogen sind. Gesamteindruck rötlichbraun mit wenig Grau
dazwischen. Die Färbung klingt an Pfilorrhoa leucosticta loriae und P. castanonota
pulchra an, die E. Weiske dem Britischen Museum aus SO-Neuguinea brachte, in der
Zeichnung an grobfleckige von Drosseln, etwa an meine Skinnerschen Platyeichla
flavwipes. — k = 1,41.
Drepanornis albertisi cervinicauda. Das einzige sicher bekannte Ei in Tring hat auf
rosa Grund viele rotbraune und graue Pünktchen und einige kleine blaßrosa Flecke. Es
erinnert an Corvus capensis (Anthony coll.). Das von SHARPE [Monogr. Paradiseidae,
London, Part IV, 1895 (nach GILLıarD 1969, S. 135)] beschriebene, von Ramsay er-
haltene Stück soll rahmfarbenen Grund gehabt haben, mit rötlichbraunen und hell
purpurgrauen Längswischern. Es ist besser, schon wegen der Maße, einmal 34, einmal
39x 25 mm (Raxp & GILLIARD 1967, S. 471, bzw. GILLIARD ]. c.), zu vernachlässigen.
— k= 131.
Epimachus meyeri meyeri (= Falcinellus). Vom Ei dieses Schmalschwanzsichelhopfes
liegt ein Unicum in Tring. Hellbrauner Grund, recht dunkle bis schwarzbraune Längs-
wischer. — k = 1,43.
Epimachus meyeri bloodi. In einem Mocs- und Rankennest wurde ein ovales, zimt-
farbenes Ei mit schweren braunen, grauen und rötlichbraunen Längsstreifen, vor allem
am stumpfen Ende, und mit kleinen braunen und lila Sprenkeln gefunden (GILLIARD
1969, S. 145). — k = 1,45.
Ein Bastardweibchen von Epimachus meyeri bloodi x Astrapia mayeri legte wohl im
Hallstrom-Fauna Sanctuary Nondugl, Papua, 1961 ein Ei, das Mayer sammelte (jetzt
im Bayer River Sanctuary, Papua). Es ist blaß rosabraun und trägt um das stumpfe
Ende ziemlich dicht purpurgraue, etwas längliche Flecke, die in der Eimitte spärlicher
werden und am spitzen Ende fehlen, ebenso wie die spärlichen, diese Flecke über-
deckenden braunroten Flatschen, die vor allem am stumpfen Ende neben 2 oder 3
braunen Kritzellinien stehen (BısHoP & FRITH, Emu 79, S. 140, 1979). — k = 1,37.
Astrapia mayeri. BISHOP & FRITH (]. ce.) fügen der Beschreibung des Bastardeies die
eines reinblütigen Schmalschwanzparadieselster-Eies an, das auch 1961 in Nondugl
gelegt wurde: es ähnelt dem vorigen Ei, ist etwas blasser und mehr rosa und überall
spärlich gezeichnet. Auffällig ist das Vorhandensein einzelner braunroter Flatschen am
spitzen Ende und darum. — k = 1,50.
Astrapia stephaniae ducalis. Ein Gehege-Weibchen in Nondugl am Hagenberg legte
im Alter von 5—6 Monaten 1963 2 Eier in etwa l4tägigem Abstand, von denen das 2.
viel blasser, rahmfarben rosa, und viel weniger sowie blasser gezeichnet ist. Das erste hat
Passeriformes: Paradisaeidae 685
blaßrosabraunen Grund; seine auffälligen, breiten und langen blaßpurpurnen und
-rostbraunen Blattern verlaufen vom stumpfen Ende weit abwärts, lassen dabei aber
das spitze Drittel fast frei. Über ihnen liegen einige schwärzliche Flatschen. — k = 1,39.
Astrapia stephaniae stephaniae. Das zuerst bekannt gewordene, von seinem Sammler
Anthony der Stephanie-Paradieselster zugeschriebene Ei in Tring mißt nach HARTERT
(1910, S. 488) nur 36,5x 25,4 mm und kommt denen von Paradisaea apoda raggiana in
jeder Hinsicht so nahe, daß es wohl sicher zu dieser gehört, wie schon OGILVIE-GRANT
(Ibis 1912, S. 114) vermutete. (Auf die geringe Größe kann man diese Behauptung
wohl nicht stützen, wie die allerdings der Gefangenschaft entstammenden Eier der
vorigen Unterart zeigen. Hrsg.) HARTERT hat es sehr gut abgebildet, aber nicht in der
Sammlung belassen. Beschreibung siehe unter Paradisaea a. raggiana. Drei richtige,
einander sehr ähnliche wurden in F. J. Brooks Vogelhaus gelegt, von denen aber nur
das eine im Britischen Museum untersucht werden konnte (s. a. CAT. Brır. Mus. 1912,
S. 448, u. SCHÖNWETTER 1944, Taf. 1, Fig. 9). Es ist das bei weitem größte dieser
besonderen Gruppe, von fast elliptischer Gestalt und gelbbraunem, leicht lachsfarben
gehauchtem Grundton. Ziemlich lange, van Dyck-braune, kastanienbraune und graue
breite Längswischer sind an zwei Stellen am oberen Eidrittel zu ungewöhnlich großen
Flatschen zusammengeflossen, wogegen im übrigen nur noch mittelgroße bis kleine
Flecke derselben Farben zu sehen sind, die sehr viel Grundfläche zwischen sich frei
lassen. — k = 1,51.
Astrapia rothschildi. Drei von C. Keysser gesammelte Eier der Blaubrustparadies-
elster im Tring-Museum glänzen, wie schon das vorige, weniger als die übrigen der
Gruppe. Auf dem rosazimtbraunen Grund stehen hier die weniger in die Länge ge-
zogenen, leberbraunen Flecke und Wischer weiter auseinander und mehr am dicken
Ende, dazwischen zwei größere und dunklere. Lavendelgraue Unterflecke in Streifen-
form ziehen sich über die ganze Oberfläche. Zum Teil erscheint die Grundfarbe mehr
rötlichgrau. Echter Paradisaea-Charakter. 35,3 x 26,2 = 0,63 g; 33,6 x 27,8 = 0,65 g;
36,8 x 28,2 — 0,72 g, demnach bedeutend kleiner als das Gehege-Ei von A. st. stephaniae.
— k = 1,28, also gedrungene Eigestalt.
Lophorina superba latipennis. Von dem Ei der folgenden Unterart des Kragenhopfes
durch starken Glanz verschieden, in der Färbung etwa in der Mitte stehend zwischen
den beiden aus Tring beschriebenen Typen von 2. s. minor. Braungelber Grund, dicht
stehende rötlichviolette und braunrote Flecke längsgerichtet, aber nicht geflammt, am
dicken Ende etwas gedrängter als auf der übrigen Oberfläche. Sammlung Nehrkorn:
30,1 x 21,5 = 0,45 und 27,6 x 22,2 — 0,42 g. Sammlung Domeier: 32,2 x 23,3 — 0,48 g
und 33,8x 23,8 = 0,55 g. Hierher gehören vielleicht die kleinen, in Stuttgart als
Manucodia chalybatus orientalis liegenden Eier (Beschreibung s. M. chalybatus, S. 681).
— k = 1,36.
Lophorina superba minor. Das einzige Stück im Britischen Museum ist auf blaß-
bräunlichem Grund überall wie bestäubt mit hellen gelbbraunen Stipperchen neben
vereinzelten kleinen Fleckchen. Die hauptsächliche Zeichnung hat die Form eines vom
Pol am stumpfen Ende fast gleichmäßig nach allen Seiten hin ausstrahlenden Kranzes
schmaler, van Dyck-brauner und dichter, lilagrauer Längswischer, die teils sich über-
lagern, teils leicht zusammenfließen. Sie bedecken das obere Drittel des Eies. 31,2 x 21,3
— 0,36 g. Erheblich anders sehen die beiden Exemplare in Tring aus. Auf dem einen
heben sich vom hell gelbbraunen Grund viele längs gerichtete, feine Strichel und einige
zum Teil längere und breitere, verwischte Flecke von blaß braungrauer und hellbrauner
Farbe nur wenig ab. Es mißt 32,1x 22,5 = 0,35 g und erinnert an hellbraune Porzana
parva, wenn man sich deren matte Frickel ungleichmäßig verteilt und weniger einheitlich
in der Größe vorstellt. Das andere hat warm rahmfarbenen Grund mit einer Menge
686 29. Ordnung
trüb lilabrauner und grauer Spritzer sowie etwas gröberer schmaler Fleckchen, die zwar
auch gewischt sind, im ganzen aber mehr den Eindruck einer Marmorierung erwecken.
Maße 31,6 x 20,7 = 0,44g. Ein 1940 gesammeltes Ei beschreibt HArrıson (Emu 71,
S. 86, 1971) als blaß rahmgelbbräunlich, überall mit einigen sehr feinen Sprenkeln und
mit schweren trübbraunen sowie lavendel Längsstreifen.
Da die Farben matt sind und der Schalenglanz fehlt, erscheinen diese Eier schlicht
und unauffällig gegenüber den geflammten von Ptiloris und Paradisaea, an deren Charak-
ter sie nur sehr entfernt oder gar nicht anklingen. — k = 1,46.
Parotialawesiilawesii. Bekannt ist anscheinend nur das von Anthony gesammelte Ei
des Blaunackenstrahlenparadiesvogels in Tring. Auf hell sienabraunem Grund stehen
unregelmäßig lose überall verteilt vorwiegend kleine bis mittelgroße und einzelne gröbere
Flecke von rostbrauner, zum Teil sehr dunkler Farbe und nicht scharf umgrenzter
Gestalt, die gröberen im oberen Drittel. SchaLow (1915, S. 289) glaubte nach den
Abbildungen bei HArTERT (1910, Taf. 10, Fig. 20) und im Car. Brit. Mus. (Bd.1,
1901, Taf. 4, Fig. 6) eine „überraschende Ähnlichkeit‘“ mit Coturnix novaezelandiae zu
sehen, was eine irrige Vorstellung erwecken kann. Denn der Vergleich paßt höchstens
für den Zeichnungscharakter, nicht für die Farben und auch nur für das abgebildete
Stück der in der Fleckungsart stark variierenden Wachtel. Mich erinnert das Parotia-Ei
(SCHÖNWETTER 1944, Taf. 1, Fig. 6) eher an solche der Ralle Porphyriops melanops in
deren stärkst gefleckten und dunkelsten Typen, auch an das der Timaliide Pirlorrhoa
leucosticta loriae und der Corvide Cissilopha beecheii, von denen freilich die beiden
letzten mehr Rot als Braun in der Färbung und rundlichere Flecke haben. Im Gesamt-
eindruck keine Ähnlichkeit mit Eiern der anderen Paradiesvogelarten. — k = 1,37.
Parotia lawesii helenae. HARRISON & FRITH (Emu 70, S. 177, 1970) beschrieben ein aus
Boneno nahe Mt. Simpson, SO-Neuguinea, stammendes glänzendes, hell bräunlichrahm-
farbenes Ei mit breiten braunen, grauen und purpurgrauen Längsstreifen und einigen
kleinen Flecken und Flatschen. Es ist allerdings über 50%, schwerer als das eben
beschriebene der Nominatform, was bei der etwa gleichen Größe der beiden Rassen sehr
auffällig, aber nicht unmöglich ist. Weitere Eier von Parotia sind zur Bestätigung der
streifigen Zeichnung erwünscht. — k = 1,38.
Cicinnurus regius regius. Die beiden in einer Baumhöhle mit einer etwa 2,5—4 cm
weiten Öffnung und auf einer Palmfaserunterlage gefundenen Eier, die Frost (Avicult.
Mag. 8, S. 33—35, 1930) beschrieb, waren rosarahmweiß mit dunkelbraunen Streifen am
stumpfen Ende (GILLIARD 1969, S. 199). Damit ähneln sie bis auf die viel kleineren
Maße den Eiern von Paradisaea apoda. — k = 1,31.
Diphyllodes magnificus hunsteini. In einem Moosnapfnest liegen die beiden Eier des
Gelbkragenparadiesvogels, die mehrfach in Übereinstimmung mit SCHÖNWETTER (1929,
S.208; 1944, S. 11) beschrieben wurden: Auf glänzendem, gelblich rahmfarbenem
Grund liegen schwere hellbraune und dunkelpurpurgraue, breite Längswischer, die
manchmal zu mehreren zusammenfließen, dazwischen kleine, hellbraune Strichel da
und dort; immer bleibt viel von der Grundfläche frei und auch weitgehend die Pol-
gegend beider Seiten. Keine roten Töne. Sechs Eier in Tring und zwei im Museum
Alexander Koenig in Bonn stimmen gut überein. Hervorragende Abbildung des Geleges
samt Nest im Kornısschen Katalog (1932, Bd.4, Taf. 9, Dr. Keysser coll., Sattelberg). —
k — 1,35.
Paradisaea apoda apoda. Von dieser größten Unterart des Großen Paradiesvogels
wird man größere Eier erwarten als das durch A. B. MEYER zuerst bekannt gewordene
(Zschr. ges. Orn. 1, S. 293, 1884, Taf. 17, Fig. 2), von Ribbe auf Aru gesammelte und die
in Tring und im Senckenberg-Museum gesehenen, die denen der kleineren Formen ent-
Passeriformes: Paradisaeidae 6837
sprechen. Danach würde nur das große im Britischen Museum (39,4 x 27,4 = 0,81 g)
richtig erscheinen, das in unserer Liste gesondert angeführt wird. Gute Abbildung bei
OGILVIE-GRANT, Ibis 1912, Taf. 3, Fig. 2). — k = 1,44 (beim Dresdener Ei; k für alle
6 Eier = 1,42.)
Für die Richtigkeit auch der anderen spricht aber, daß sie ebenfalls von Aru stammen,
wo nur die Nominatform vorkommt. Ihre Färbungsähnlichkeit geht bei allen fünf
genügend weit: Sienabraune, rot- und graubraune sowie lilagraue Töne sind in langen
und kurzen, schmalen und breiten Pinselwischern gemischt, die vom Pol am dicken
Ende in Richtung nach dem anderen Pol ausstrahlen, gerade oder gebogen sind und
etwa ein Drittel des rosarahmfarbenen bis lachsroten Grundes bedecken. Da und dort
sind auch einzelne noch dunklere Spritzer und Punkte. Rotbraune und graue, sich
überdeckende Flecke erscheinen wie Flammen und erhöhen die Schönheit des Ein-
drucks ebenso wie der hohe Glanz. MEYERS Stück, von OGILVIE-GRANT (]. c.) fälschlich
für P. raggiana gehalten, mißt etwa 35x 25mm (zerbrochen). — k = 1,40. Tring:
35,2 x 25,5 = 0,63g und 38,4x 25,4 (defekt, voll Watte. — k= 1,38 und 1,51.
Senckenberg: 35,5 x 24,6 = 0,59 und 33,6 x 25,0 = 0,59 g (etwas fahler gefärbt). —
k = 1,44 und 1,34.
Würde die relative Kleinheit der Eier, die aus der Sonderzeile unserer Liste hervor-
geht, weiterhin bestätigt, so könnte man der sich auch sonst zuweilen aufdrängenden
Vermutung Raum geben, daß hier die größere Form die jüngere sei und ihr Ei als
urtümliches Gebilde beim Wachsen des Vogels nicht gleichen Schritt gehalten hat. —
k — 1,42.
Paradisaea apoda raggiana. Zwei Eier in Tring, von Anthony gesammelt, messen
38,2 x 24,4 — 0,63g und 37,7 x 25,7 = 0,73g. Sie ähneln den roten P. a. augustae-
victoriae desselben Museums durch ihren rosarahmfarbenen Grund mit gut ausge-
prägten rotbraunen, nebst wenigen violettgrauen, strahligen Wischern. Ebenso sind zwei
im Britischen Museum mit leuchtend lachsrotem Grund und bräunlichroten sowie lila-
grauen Längsstreifen. Sie messen 35,5 x 23,6 = 0,62 g und 36,5 x 26,8 = 0,70 g. Die
Zeichnung tritt nach dem breiten Ende hin dichter zusammen, wie auch sonst in der
Regel, wobei das eine Ei des Geleges zuweilen weniger lebhaft gezeichnet ist. Im ganzen
erscheinen die raggiana-Eier etwas dunkler getönt, worin sie vielleicht denen von
P.a. apoda näher stehen als die anderen Unterarten.
Dies gilt auch für das unter Astrapia stephaniae stephaniae erwähnte Ei in Tring, das
höchstwahrscheinlich hierher gehört. Es ist im Grunde mehr bräunlich als rot und
trägt schwere, tiefbraune Längswischer neben heller braunen, die mit einigen kürzeren
gemischt sind und am schmalen Ende durch etliche dunkle Strichel ersetzt werden.
Maße dieses Eies: 36,5 x 25,4 mm nach HArTERrT (1910). Dem oben erwähnten 2. Ei des
Britischen Museums kommt nahe das schwerste (0,77 g) Ei von Phonygammus kerau-
drenii purpureoviolaceus derselben Sammlung, da die Art sonst einen anderen Zeich-
nungstyp aufweist (siehe dort). — Über fünf im Britischen Museum 1934 gesehene
rötlichgraue Eier, die fälschlich als P. raggiana bestimmt waren, wurde oben bei Manu-
codia jobiensis rubiensis berichtet (S. 680). — k = 1,48.
Paradisaea apoda augustaevictoriae. Sehr ähnlich der Nominatform, aber in der
Grundfärbung wechselnd. Die meisten zeigen diese auch hier rosa oder rötlich rahm-
_ farben, so 7 in Tring, je 2in Bonn und bei Graf Seilern (Kuschels 2. Sammlung), 1 in der
Sammlung Domeier sowie die beiden von MEyEr (Ibis 1893, S. 481) beschriebenen.
Andere waren mehr rahmfarben oder gelblich, so je 2 in Tring, Bonn, Dresden und bei
Nehrkorn!). Diese haben zum Teil mehr olivbraune Flammenstrahlen, die rotgrundigen
!) 2 so in Stuttgart genannte stehen in unserer Liste bei Pfiloris magnificus intercedens, wohin
sie offenbar gehören.
688 - 29. Ordnung
dagegen mehr leuchtend geranienrote, rotbraune und ähnlich getönte neben den ebenso
breiten, helleren und dunkleren purpurgrauen Unterfleckenwischern, fast immer da-
zwischen kleinere Fleckchen und Spritzer derselben Farben, was alles sich oft drastisch
abhebt. Bei manchen treten die grauen Flecke stark zurück, und es ergibt sich dann ein
zwar weniger kontrastreicher, aber dennoch herrlicher Gesamteindruck von verschie-
denen glänzenden Rot-in-rot-Schattierungen. Ganz wundervolle Eier! Gute Abbil-
dungen auch in KoEnıss Katalog (1932, Bd. 4, Taf. 8, Dr. Keysser coll., Sattelberg 1912,
Eimaße von Dr. F. NEUBAUR, Bonn, briefl. 1935). — k = 1,42.
Paradisaea minor finschi und minor. Zwei Eier jeder dieser Formen in Tring unter-
scheiden sich nur dadurch, daß die finschi schwerer, also dichter und gröber gezeichnet
sind, was aber offenbar individuell ist. Grund und Fleckung haben nichts Rotes im Ton,
sondern jener ist gelblich rahmfarben, und diese besteht besonders bei den finschi in
breiten, langen und kürzeren, braunen und noch mehr purpurgraubraunen Wischern,
wie solche in so großem Ausmaß und so schwer sonst nur selten gefunden werden, dazu
nach RAD & GILLIARD (1967, S. 498) aus Strichen. Rötliche Töne gibt es aber auch;
denn das finschi-Ei, das BısHoPp & FrıTH (1979, S. 141) aus dem Gehege in Nondugl
beschrieben, ist rahmnelkenrötlich, überall dicht purpurgrau, rötlich und bräunlich
gepunktet und gefleckt, nur am stumpfen Ende mit einigen länglichen und besonders
großen Flatschen. In der Mitte des Eies liegt auf vorwiegend dunkelgrauen Flatschen
eine feine braune Pünktelung (peppering). Das eine minor-Ei ist ähnlich, das andere
besonders stark und viel weitläufiger, loser gefleckt. — k = 1,36 bzw. 1,38.
Paradisaea rubra. Von fünf vollkommen entwickelten Schalen in Gefangenschaft
gelegter Eier des Rotparadiesvogels im Britischen Museum besitzen drei einen lachs-
farbenen Grund mit ziemlich dichten, prachtvoll dunkelroten Längsstreifen und einigen
grauen dazwischen. Gesamteindruck: leuchtend rot, viel röter als bei P. apoda. Maße
33,5 x 23,9 — 0,58 g und 34,8 x 24,0 — 0,62 g und 35,6 x 23,8 — 0,56 g. Ein weiteres
ist fast ebenso, hat jedoch mehr blaßrötlichgrauen Grund, und die weniger dichte Zeich-
nung sitzt mehr am dicken Ende. Es mißt 39,0 x 25,0 — 0,79 g. Das letzte steht hin-
sichtlich seiner Färbung in der Mitte zwischen den vorigen Typen (36,1 x 24,5 — 0,58 g).
|Dagegen sieht das von Frost gesammelte Ei der Kreuger-Sammlung in Helsinki an-
scheinend wie die hier zuerst beschriebenen Eier aus, zeigt aber bräunlicher rote statt
dunkelroter Längsstreifung. Hrsg.] — k = 1,36. (Taf. 12, Fig. 15.)
Paradisaea guilielmi. Von den nur in Tring angetroffenen Eiern des Kaiserparadies-
vogels, die Keysser am Sattelberg sammelte, haben 3 einen rötlichen, etwas zimt-
farbenen Grund, 2 einen viel helleren, mehr rahmfarbenen. In einem dieser Gelege soll
ein weißliches und ein rötliches zusammengehören. Zwei so helle von P. apoda augustae-
victoriae bildete Koenig (l.c., Taf. 8, Abb. Ic) in seinem Katalog sehr gut ab. Die
braunroten und grauen Längswischer sind teils schmal und weiter voneinander ab-
stehend, teils breiter und dichter. Verschiedenartige Tönung der Fleckenfarben wie bei
anderen Arten der Gattung auch. — k = 1,43.
Paradisaea rudolphi rudolphi. Das einzige bekannte, von Anthony gesammelte Ei des
Blauparadiesvogels in Tring ist in der Grundfarbe warm rahmfarben, nicht so rosa wie
bei mehreren Verwandten und auch nicht so lang geflammt, sondern mit kürzeren und
nur schmalen, vorwiegend braunroten und einzelnen blaßgrauen Wischflecken ge-
zeichnet, die eine Längsrichtung nur andeuten und wenig dicht stehen, in beiden Pol-
gebieten eher dichter als in der Gürtelzone. Sehr viel Grund bleibt frei. Man kann in den
kurzen Flecken einen Übergang der Zeichnung von Paradisaea und Phonygammus
sehen. Gestreckt oval (k = 1,58).
Passeriformes: Paradisaeidae 689
Paradisaea rudolphi margaritae. Ein 1962 in Nondugl gelegtes Ei des Bayer Sanctuary
von Papua, das Mayer beschriftete, ist trüb glänzend und sehr blaß rosabraun, um das
stumpfe Ende stellenweise wohl durch Auslaufen von Farbe schwach rosabraunrot
gehaucht. Dünne, wenig in die Länge gezogene purpurgraue Flecke stehen besonders
dicht um das stumpfe Ende, wo sie auch etwas dicker sind. Darüber liegen rotbraune,
unregelmäßig geformte, nicht verlängerte grobe Flecke; am dichtesten und größten sind
wieder die am stumpfen Ende. Ebenso gefärbt sind spärliche Punktflecke (BısHoP
& FRıTH 1979, S. 141, Taf. 3f). — k = 1,34.
Species incerta: Ein unbestimmtes Ei trieb ich bei E. Weiske auf, der es als ‚Dre-
panornis albertisi oder Phonygammus jamesii‘“ offenbar irrig bezeichnete. Es hat auf
weißem Grund nur lilagraue und einzelne ganz blaß rotgraue Fleckchen auf der dicken
Hälfte, ist also ebenfalls ein bisher noch unbekannter Typ, dessen Maße wir am Ende
der Liste einreihen. — k = 1,44.
44 Oologie, 38. Lieferung
29. Ordnung
690
jodıyoay-xneogswooayugf, qq wı
Aqurunion 'n UYSnouPpooH *“Uossndlo]
(z/») (Baoqjoyyug oA aorzy)
(ukuouAs
SUAIAT T0q "pweapeg sapmyuando "W)
woumanoN 'n [OSIW
(z/> :yuwan))
(gnpf-eyftump WOA A9157)
nweyy u9A9g0 umz
n gyongf-oqejoagsy stq Q vwoumanon- MS
(ujosuf nıy [/o :a08no1y[)
S wı Lang unz ‘N wı ısnwnyg
unz sıq M WOumdnoN-OS 'n ujosuf nıy
(a- 1/0)
Lang wnz sıq
vago g wr 'n JJoY-uony $SIq O voumsd
-NON-S mn -N “ujposuf oyostuended- MA
(1/0 :aoyedg)
(wIoywwpeH UOA aoızy)
(uoyynjom) urlyegg pun raoyewper
(uno) 140
(1/0 :puwy)
(ANIOH-ıRIg
n -Mmoug “-oluwıg) woumdnoN-[eayusz
(BUgONH-Aogungg USAO T/T :Auoyyuy)
voumanoN-OS
IP1°O
XoL
8210
(IXOL
LITO
(IXOL,
gel 0
(4XOL
0F10
L#T°O
To
(u9psolgg *n UOPIoT "sn)
3.08°7—96‘0 = 008 9°63 X HH —8‘TIF
IOYL[IS 22.0009 17.1U109 DIPOINUD
(199 MUOLPS MOoysoLL, "A ‘uyny
“IOTOWOLT “ULONayoN "[uweg "DUurıT, "SU)
3 F1'0-—99°0 = 183-398 X E'8E-9'EE
(yuwuuog) snyngkimya DIPoonuD Ar
(wnosnpy SOyostyLagg)
890-890 = 975-1 FEXF FETTE
1049 e: Ei sısuargol Dıpoonun ir
(1867 "PLıq ‘ONAIH
-UaL PT uopsoaq saw T “sn "Mag I
“dur, "Sam P ‘0067 ATaog AT ypru g)
3 F0°1 E10 = 968-897 X FH —0'8€
"HN AM orpgns “opn mıpoonun pr
(16 'S ‘6967 auvITI)
you T !8E6T ANYY yaeu Z !aoyyomuoyag
‘juweg ‘Duni, "sup uroyayoy "jutueg)
3 96°0—08°0 = 81307. X FTP — (0'g$)
(UOSSO"T) .109D „ion Dıpoonun Ar
[saw "ag
wr (8967) uamuvg yoeu g ‘uoprorg sup]
3 06°0 = 198 — 0'938 X 6'8E—-7'7E
("dey) snogdoyuuhd snaogdoy.ıuhd unı0909hT
(uoyayoN) 3 F0°T = 0°67 X 0°TF
:(uopro) 3 66°0 = F'STX 0'0F
UTOISUIOET Sasuargo sn.«ogdoy.«uıhid an.ı090ohrr
I
(anvy yoru)
DUnP HDu1rJ0.m0 Duyopnd wı40ba4bon W
(Sura], (wnosnw-dTIHOSHLOM)
&
&
sıa 9a Wuobaıbonu aıoboıbonw snpydowou) |
691
(2/2 :19oN)
(snasıpr.ınd qus yane !n4oydopadsnı4) —)
(Sur, wnasny wıg
:62 8 'T06T HLMON :69 'S ‘061 TIAHANV,))
3 190-870 = 987-875 X 6 9E- 808
(PIgaH-sumey) puejsusond-N | Y%L'S 98 ‘(mrausfg "ıq Asyeds) uyng “uıoyayoNn
R (uosdumg "IA wweg j ol ‘Dura, saw g “sn ag €]
A oyeu z/0 Z :yglıg X uosLLeH) 3 110 88°0 = 998-073 X 088 9°F€
u (yuueuod adreyg r2s9Wwml 910119 40) (4x9, L Sys) 9A
= BOUMSNaN-OS IACHG, 11 0370 990 7'07 g‘gg snaonjoraoaımdınd nuaıpnnıay snunumbhuoyf £]
= (EL6T ‘68T 'S
S ‘eg, nwg ‘sUaLıIvM 9 NoSINuvH yoeu)
© 995 805 X 9'8E-0°LE
Q (eL-SyeM woA T/ :wnasnp ‘Mag) MOUuoyalayg,
& (H91Q99-A1daS) BoumnSnaN-Teigusz —_ ze] = = 09% GLE vuumumau wuaıpnDıay snunupbhuoyg &
("[f09 9sorg “T/T :aodnoıy)
(ujosuf nıy uoA Bes! ale)
[guueus3 (youieH (1867 'IPLIQ ‘ONAIH
9 UOSSIT) VaUaıpnDAay 370 aaynaz] -JML 'L yoeu [ “snpy 'pag [ ‘Surı], 'snp g)
Fyong-IIeH STq nA (4X L ay2ıs) 3080-390 = 898 —- T'E3 X g‘0F — 1'ZE
-eyTump UOA BoumsnaNn-g “upossuf nıy | %9'C 9°01 0210 290 1727 p‘cg adwyg soul muaıpnnıay snuwmbhuoyg ©
(Zutt], wnasny)
(2/2 : To) 3 ST T—-0T°T = 908 963X 997 9°
(uposuf puerigoss) eunopeyp 'n eurmtuyg | %9'‘C 208 a) r70 10€ or ae 2pum.igo.g 9.1109 mıpoomunmr 7
su | D) p 3 | a | V
44*
(Saoqusdrn um Hdoyor) sn® aoısy)
(IP1I99-purpsprig sıq Bıog (HLIAT N dOHSIE pwu)
HAN) "N -UESRH) BOumdnoN-[rayusz — 207 — — 0‘L% 9°0F 10uogg niafmu mıdnuysy |
([P50ASIFräSUAFUrJON) *SO19q (HLINT 9 dOHSIE yoru)
-WSTH SEP YPIGSH) BoumanoN-[eayuoz n or] = -- 162 868 wohmu mıdnasp X ıpoorq wıahow snyowundszy |
(SFAGON-I0gNnN] WOA I)
(FMGIH-NOAIBUISIE]
SIqQ S1OE- HAN) BEUMÄNON-Trajuoz = G'G] - _
("09 Auoyyuy
“BUGONH-ÄfurIg UOMO WOA AOIT)
(6961 auvITun) yoru)
0; pvp) X alu 2poogq wohow snappundz |
(Sur, wnosnw)
BFUgOH-B0zIoH SsIq M wBumsnon-oS | %6'r 0'z1 SOLO 60 g‘0z F'9£ yosurg mahaw aıahou snywwndz |
(4x9, L Py9ıs) (Surf, wnosny)
g'TE IOEIS DpnDITuNa.ı199 151710970 stusoundaut |
3770 = 0/77 X 17€
(31ogpygeg oA aoıs]) (Sur, wnosnw) |
60 3 890 = 4'75X 9°0€E
= (Boumsnon-ON) [PPsurgey-uonyg r9 1'8 zI1°0 9F°0 227 FIE 9A 14ags1ob ası]4aqpp STUA0undauT %
a BOumanoN-Traguaz (4x9,L Syaıs) "H 9 'y Ppnoonaaıq (Dppmaun.ımd) pppbıpn.ımg —
5 (grgay- dag 1/0 "PaeHtO)
o Jyang-ogejoagsy "1 (6961 AUVITII) yoru)
& num sıq oURIEqULEIN WOA N — 9°p] _ — G'97 Lor daonyag sıuuadıımn Donajounpw sıpıamapg |
(gupg-edeusA woA ı7)
[ (109810, 7) sngoubr sopıanapg' =]
(wo, ] uogsyawu (Sur, wnosnwW)
da9p YOIgEN) Aagme) woumanoNn Yeaneeg %9r LI 0110 89°0 T‘LZ 1'6€ (uıpneeg) Bonojounpous PU UgB sıpımapas I
(9L 8 "1061 TO
(z/> yaıruyomod) :P6E'S ‘L68T SAL ‘ATAoS AT :68 'S ‘TOGT
(nıoydopadsnı4) —) HLMON “UION.IUON "[wwveg “wnosnpL "Yug)
(SIIIEH-EINIA 3 09°0—-39'0 = 698 9°35 X 8° FE —0'2E
-orpnep) 'n -yıoA dey) PUSTNSSUNT- N %0'9 9°6 czro sc) F'ez [gg Jolfst 244099 snorfvubou sttoyT £1L
(z/> yaıruyomss) (1OYPAMUOYIS 'n SOP.IO/) "Twweg ‘4.188
(nıoydopadsnı) =) NIS sn wg ‘BULL, "Sup “Sn ‘4Lıgg)
Ss ur Jyong-IeH UN 3 09°0—93‘0 = 1'935 EEE X FTSE -F'ZE
wı JyongJ-oqr[oagsy SIq M BOumSnaN-OS DLG e'ol 1210 [Ra] 2'772 0'FE odıvyg suapaasayur snorfrubou sog £1
) p 3
woumanon-os | KL | F6 1210 | 70 177
692
693
Passeriformes: Parasidaeidae
(oIUGgSH-Aajurgg UEAG WOA AOL)
(yuuo19d »podn 7 uoA wumbbns "LI
gay Se yonv uULIOT AOPU9sjoF Yu)
(gyang-oufım
STG FYONSF-OLIBSURIGQ) BEUMSnaN-O
(ujosuf nıy U9I9PUR UOA yane [yoM AOL)
(ueJoM UOA IM)
ujosuf nIvy
(Saogjogges woA Z/O :1988AoyJ)
INA
-Ajg wnz Sg wı 'n puejsrog-TyeM ‘N
wı [osurgpepg]-uong SIq M toumnsnaN-O
(2/9 :g8017)
U[OSUT-NIY
(oSarg99-1oydeasompÄH
08) BEUMSNON-OS UT AS.Lq9H) AOp 9aS-N
(95.1199H9-Adjur4g USMO)
SBIUMSNIN-OS 9HUq9H AOP Oag-S
(ousuog
UOA J ‘O811I9H-AHJurISg UOMO WOA AOTA)
BEuUMmSnoN-OS
(SI9gJ9I9eS WOA do)
(esumsnoN-ON) [Psurgeg-uong
(esumsnaN-ON “PsurgfeH
-UoNnF) 931g9H)-uosummeyy 'n -podeamnaeg
(esumsnoN-OS) HHugaNn)-Aafuegg UOAO
(SI9qUSAIeH we HF9yaH) sne AOIf)
(511G9H)-30Z10H SIq Saoq
-uose] 'n -omnILg) BoumSnoN-[eryusz
| (4X OyoIS)
one | ei | an | er | er |.
(IXOL, Jy9IS “uU9SsOJy9s9JUurd IF] 951IO SUP)
rer 9770 790
er | 8270 | 78°0
98
P°6E
gg
rLa
9070 cH0 red ETE
— £9 - _ 01% Oz
= s<ı = = 812 F's8
%9 | 0071 zEeT0 | 390 ig T’eE
(4xa,L Oypıs)
Das | 9“ | 600 | 8E0 | EZ | 9°TE
(9X Syaıs)
%6'T | 1‘8 | 9ITO | sro | 1'327 | 6'08
(Ix9,L Oyo1Ts)
Kor | Ce sıro | 290 F12 2 ß
wg > g 1
Eu? i
er j ” .
I PL 7 BEE a 0 Be TETN,
.
E = Er fr | ; | $ x e Pi
ET, RL Er “ Pä i 3
Er - x
e e
_ HERAUSGEGEBEN UND ERGÄNZT VON -
Prof. Dr. WILHELM MEISE
Zoologisches Institut und Zoologisches Museum Hamburg ‘a ie,
Lieferung 39 N
i % PN
+ = Kı
i
>
54 % £
% Sr ci
„u
2 f
x. = %
* 2 v R
“ w
E; D
x
_
AKADEMIE-VERLAG . BERLIN \ fe.
1983 /. LER, =
“ £ -
> y a4 .
DAL", Fre, 4 .
ut ei x .
AV, £ 4
AT N 7 < €
; R ä “=
x
AR y x er Dr
Seite 7105-768 | ö BR nr 5
Tafel, 13 und 10 Fa
: e Ri B “
nt 0. INHALTSVERZEICHNIS FÜR DIE LIEFERUNG
ö Familie Corvidae (Fortsetzung) RR ee, ;& I 5
Nachträge zu Band III „Handbuch der Oologie“ ... .. . . - on.
h u
, 2 e:
| \
“ |
Erschienen im Akademie-Verlag, DDR- 1086 Berlin, Leipziger St
© Akademie-Verlag Berlin 1983 we
Bestellnummer: 202 - 100/475/84
Printed in the German Democratic Republic
(resanibererellage. VEB Druckhaus „Maxim Gorki“, 7400 a >
/ LSV 1365 Wr
x RN SEHR Bestellnummer: 7163 030 9 (3037/39)
er®, j e : \ . 7 01400 “ ‚ Dips!
; ' ' { u KEN er:
. W; i 3 0 ! d
’ 2 y - x NV
Passeriformes: Corvidae 705
Die bunten Foster’schen Stücke im Britischen Museum messen 27,9—33,5 x 21,1
—23,1mm, sind aber in unserer Liste nicht berücksichtigt. Ein Dreiergelege aus
Paraguay, entstammend der Dalgleish-Sammlung, das ich unter dem Namen (©.
cyanomelas erhielt, ist ebenso buntgeblattert, aber etwas größer (D, = 34,1 x 23,9
— 0,65 g). [Dagegen sind die 12 kleineren Eier, die Schönwetter cyanomelas zuschrieb,
also nicht chilensis, etwas kleiner (Dj, = 29,5 x 21,2 = 0,46 g, G = 6,5 g). ScHön-
WETTER (MS) hielt die 3 vorher erwähnten Eier für chilensis; aber es spricht mehr dafür,
daß sich zwischen Ost- und Westpopulationen kein wesentlicher Größenunterschied
ergibt, zumal neben den zahlreichen chilensis zugeordneten Buenavista-Eiern auch
einige C. cyanomelas-Gelege waren. Hrsg.] (Taf. 13, Fig. 3.)
O'yanocorax violaceus violaceus. Nach CHERRIE (1916, S. 213) bläulich weiß, dicht
überall mit verschiedenen braunen (weinfarbenen bis kastanienbraunen) Sprenkeln,
deren hellere unter den dunkleren liegen. — k = 1,38.
Oyanocorax cristatellus (= Uroleuca). Hellblau, überall dieht mit braunen Sprenkeln
verschiedener Töne, bis schwärzlich, am stumpfen Ende gröber. Recht hübsche Eier
(nach v. IHErıne 1900, S. 223, der sich auf ALLEn, Bull. Amer. Mus. Nat. Hist. 3,
S. 380, 1891, 1 Dreiergelege von Chapada, Mato Grosso, stützt). (Die Trennung dieses
Krauskopfblauraben in einer besonderen Untergattung (so u.a. bei HAırpy) oder
Gattung ist oologisch nur dann gerechtfertigt, wenn man auch (©. violaceus und C.
cyanomelas dazu nimmt. Hrsg.) — k = 1,45.
Cyanocoraz affinis affinis. Nach SCLATER & SALvIn (Proc. Zool. Soc. London 1879,
S. 510) lehmbraun, dicht, besonders am stumpfen Ende, mit verschiedenen Schattierun-
gen von Gelbbraun gesprenkelt. Diese in das Britische Museum gekommenen Exemplare
findet OGILVIE-GRANT (Cat. Brit. Mus. 1912, S. 498) übereinstimmend mit blaßbraun-
srundigen von Ü©. chrysops chrysops; mich erinnerten sie auch an Lanius excubitor-
Typen und an bräunliche von Pyrrhocorax. Nehrkorns Stücke zeigen dementsprechend
sanz den Typ hellgrundig gelbbrauner Pica-Eier. — k = 1,39.
Oyanocorax chrysops cyanopogon. Ziemlich glänzend, rahmfarben, besonders am
stumpfen Ende schwer mit hell- und dunkelbraunen sowie violetten Frickeln und
Punktflecken besetzt, andere Stücke mit hellgelblichgrauen und blaß purpurbraunen.
— k=1,43.
C'yanocorax chrysops chrysops. In Färbung und Zeichnung ungemein variant, so daß
sich Typen wie die bei Vorvus, Pica, Perisoreus, Pyrrhocorax und selbst Urocissa
finden, nämlich
1. Hellgrüner Grund mit lose stehenden dunkel sepiabraunen und ziemlich dunklen,
schiefergrauen Punkten und Flecken. Am breiteren Ende teilweise große olivbraune
Flatschen. Viel Grund bleibt unbesetzt. Ganz wie helle Kräheneier (Corvus corone),
nur kleiner.
2. Graugrünlichweißer Grund überall mit vielen mäßig dichten, zarten, dunkel
olivbraunen und wenigen grauen Punkten, die nach dem dicken Ende hin zahlreicher,
gröber und dunkler werden, ohne aber 1 mm Durchmesser zu erreichen. Ähnlichkeit
mit feinpunktierten, grauen Typen von Perisoreus.
3. Rahmfarbener, teils mehr grauer, teils mehr blaßbräunlicher Grund mit sehr
vielen winzigen braunen und grauen Fleckchen in hellen Tönen und mit gleichmäßiger
Verteilung auf der ganzen Oberfläche, zum Teil an dichter als gewöhnlich gezeichnete
Nucifraga-Eier erinnernd.
4. Auf blassem, grünlicholivbräunlichem Grund etwas längliche, dichte dunkel
olivbraune und graubraune Strichel und Frickel, die am dickeren Ende gröber und
gehäuft sind, wie oft bei Pica. Zeichnung teils schärfer, teils mehr verschwommen.
45 Oologie, 39. Lieferung
706 29. Ordnung
5. Hellbrauner Grund mit kastanien- oder leberbraunen, dunklen und mittelgroßen
rundlichen Blattern, dazwischen zurücktretende, ebenso große und kleinere bleigraue
Unterflecke, hauptsächlich auf der breiteren Eihälfte. Anklang an Urocissa.
Die Gestalt ist weniger oft breitoval als länglich mit kräftiger Verjüngung des
einen Endes (k = 1,37—1,44). Der meist nur geringe Schalenglanz sowie das glatte
Korn und die Poren bieten nichts Besonderes. Die durchscheinende Farbe ist hellgrün
bei Eiern mit grünlichem und grauem Grund, gelblich bis gelbgrün bei bräunlichem
Grund.
Die vorstehenden Typen (und k) sind nach meinen 23 Exemplaren aus Bolivien
und Paraguay geschildert. Außer dem ersten finden sie sich bei den 50 Eiern des Bri-
tischen Museums wieder. Dort liegt auch ein abweichendes Gelege mit bläulichweißem
Grund und sehr dunklen braunen Punkten nebst aschgrauen Unterflecken, während
die Mehrzahl ein Gepräge nach Art der Pica-Eier trägt, also vorwiegend braun gefrickelte
Stücke. Diesen entsprechen auch die wenigen in den Museen Berlin, Hamburg und
Dresden. Einen weiteren Typ beschreibt EısEntRAuT (1935, S. 439) aus dem Boli-
vianischen Chaco: auf fleischfarbenem Grund gleichmäßig verteilte, größere und
kleinere hellbraune Tupfen, so bei einem Fünfergelege und einem Einzelei. — k = 1,37.
Cyanocorax mystacalis. Nehrkorns Stück hat auf blaßrahmfarbenem Grund viele
gleichmäßig verteilte dunkelolivbraune Punkte mäßig dicht, meist nur nadelstichgroß,
dazwischen violettgraue Unterfleckchen, wie bei hellen, zartest gezeichneten von
Oyanopica cyana cooki. Ebenso überall feinste Punktierung mit kleinen olivbraunen und
grauen Fleckchen dazwischen bei dem Ei im Brit. Museum und dem in Dresden, bei
diesem so dicht und staubfein, daß es einem hellgelbbräunlichen von Garrulus glandarius
recht nahe kommt. — Innenfarbe gelblichweiß. — k = 1,39.
Cyanocorax dickeyi. Die Eier des Schopfblauraben beschreibt MoorRE (Condor 40,
S. 237, 1938) als bläulich-olivweiß (aber schon bald olivgelbbräunlich). Die in zwei
Tönen braune und darunter lilagraue Fleckung läßt sehr viel vom Grund frei (Foto
S. 240). — k = 1,46.
Oyanocorax yncas vividus (= Xanthoura). Die Unterbringung des Grünhähers
Ü. yncas in der Gattung C'yanocoraz erscheint auch oologisch gerechtfertigt. Auffallender-
weise sind die überall auf dem weißen Grund verteilten kleineren und größeren Flecke
bei dieser Rasse nach RowLey (1966, S. 171) schwärzlich. — k = 1,49.
Cyanocorax yncas glaucescens (= Xanthoura). Die Eier fallen durch die relativ ge-
drungene Eigestalt auf, sind aber sonst kaum von denen der vielleicht öfter deutlicher
gefleckten südamerikanischen Rassen zu unterscheiden und unten bei galeatus be-
schrieben. — k = 1,34.
Cyanocorax yncas luxuosus (= Xanthoura). Ob die Eier gedrungener als die der
Nachbarform glaucescens sind, muß durch weiteres Messen entschieden werden. —
a a
Oyanocorax yncas centralis und maya. Ebenso, ausnahmsweise so undeutliche und
verwischte Flecke, daß ein Bild wie bei gewölkten Eiern von Garrulus glandarius
entsteht. — k = 1,38.
Uyanocorax yncas galeatus (= Xanthoura). Vielleicht mit Ausnahme von (©. y. vividus
kommen die Eier dieser Art oft den Eiern unserer Elster (Pica) recht nahe, sind aber
kleiner und von mehr gedrungener Gestalt, meist nur wenig zugespitzt und schwach
glänzend. Dies gilt besonders für dicht und gleichmäßig überall gelbbraun und ver-
loschen grau gefrickelte Stücke mit lehmfarbenem Grund. Erheblich gröber ist die
Zeichnung seltener, aber die Grundfarbe kann mehr weißlich und auch blaßgrünlich
Passeriformes: Corvidae 7107
oder grau getönt [nach ALvarzz (Living Bird 14, 1975, S.25, 1976) bläulichweiß]
sein, die Fleckung mehr beschränkt auf die breitere Eihälfte, mit einer Art Kappen-
bildung, wobei dann die Pica-Ähnlichkeit ziemlich verloren geht, und, abgesehen von
der Eigröße, Anklänge an manche Cyanocorax chrysops chrysops und selbst an gelbbraune,
selten rötlichbraune Eier von Lanius collurio entstehen. Die Variationsbreite reicht
auch nach ALVAREZ (]. c.) von spärlicher bis dichter Blatterung. — k = 1,37.
Oyanocorax yncas cyanodorsalis und guatimalensis (= Xanthoura). Wie vorige. Marmo-
rierung kommt auch hier vor. Offenbar sind die geringen Unterschiede aller Unterarten
nur in verschiedener Größe und Dichtigkeit der Flecke zu finden. — k = 1,35.
Psilorhinus morio palliatus. Wie gelbbräunliche, dicht und zart gefrickelte Pica-Eier
des gewöhnlichsten Färbungstyps, aber meist von etwas mehr gedrungener Gestalt,
einseitig zugespitzt (k — 1,38) und fast ohne Glanz. Auf dem vorwiegend weißen
Grund, der auch rahmfarben oder grau getönt sein kann, sind die umberbraunen,
olivgraubraunen, manchmal auch dunkleren Fleckchen überall gleichmäßig verteilt,
zuweilen am stumpfen Ende etwas gröber und dichter. Graue Unterflecke sind kaum
bemerkbar. Innenfarbe gelblich. — Anscheinend nicht nennenswert abändernd.
Psilorhinus morio morio. Wie palliatus. — k = 1,43.
Psilorhinus morio vociferus. Diese Rasse des Braunhähers legt nach SKUTCH
(1960, S. 238) blasse, kalkig bläulichgraue Eier mit feinen braunen Sprenkeln, die
am stumpfen Ende gröber sind und dort fast den Grund verdecken. — k = 1,40.
Psilorhinus morio cyanogenys. Wie palliatus. — k = 1,39.
Calocitta formosa colliei. Wie schon NEHRKORN betont, sehr interessante Eier, an
grauliche Pyrrhocorax anklingend, aber kontrastreicher gezeichnet infolge der über-
wiegenden großflatschigen, violettgrauen Unterflecke, die zusammen mit verstreuten
dunkelolivbraunen und fast schwarzen Oberflecken mittlerer und geringerer Größe
den grauweißen bis hellgrauen Grund des ovalen Eies besetzen, die verwischten Unter-
flecke überall und dicht, die schwarze Zeichnung sehr lose und mehr auf der breiten
Hälfte. Bei den 3 Stücken des Berliner Museums sind die Flecke zum Teil kleiner
und gleichmäßiger verteilt als bei den drei im Britischen Museum (k = 1,39). Dort
befindet sich ein Ei von Corvus corone von ziemlich ähnlichem Gesamteindruck, auch die
Sammlung von v. Treskow im Museum Berlin besitzt ein ähnliches Ei und eins meiner
Pyrrhocorax graculus kommt nahe heran. Es sind dies Beispiele dafür, wie auch recht
verschiedene und komplizierte Eizeichnungen und Färbungen gelegentlich bei ganz
verschiedenen Arten sehr ähnlich werden können.
Calocitta formosa azurea. Nach SKUTCH (1960, S. 259) grau mit feinen, dicht und
gleichmäßig stehenden braunen Flecken. — k = 1,47.
Garrulus glandarius. Bei allen Eichelhähern dieselben, für diese Gattung charak-
teristischen und wenig abändernden Eier. Grundfarbe vorwiegend hellgrüngrau, zum
Teil mehr grün oder blaß gelbbraun getönt. Ungemein dichte, meist winzige, hell
sgraubraune Fleckchen (Frickel) bedecken die ganze Oberfläche gleichmäßig oder
am dicken Ende ein wenig gedrängter, [selten mit Zonenbildung, die aber sogar am
spitzen Ende auftreten kann (Car. Brit. Mus. 1912, S. 489)]. Es ist oft eher eine
Wölkung als eine deutliche Fleckung zu sehen, aber zuweilen mit einzelnen schwarz-
braunen Haarlinien, Stricheln oder Kritzeln im Polgebiet. Ausschließlich solche Züge
auf mitteldunkel lehmbraunem, sonst ungeflecktem Grund kommen als seltene Ab-
normität vor. Zwei ähnliche Eier meiner Sammlung scheinen überraschend orange
durch, statt wie gewöhnlich gelbgrün. Die Schale ist verhältnismäßig grobkörnig mit
45”
708 29. Ordnung
derben Poren, trägt aber immer einigen Glanz. Die ungleichmäßige Granulation besteht
teils aus Körneln, teils aus langgezogenen Graten. Zuweilen verschwimmt die Zeichnung
so stark in der Grundfarbe, daß sich fast einfarbige, hellbräunliche oder hlaß oliv-
grünliche [nach MArATscH (1976, S. 140) sogar fleischfarbene, großen Eiern von Upupa
epopos ähnliche] Stücke ergeben. Graue Unterfleckchen sind nie deutlich, meist über-
haupt nicht zu sehen. Als Eigestalt herrscht das deutlich zugespitzte Breitoval vor,
ohne mehr längliche Stücke auszuschließen (k = 1,31—1,41, je einmal 1,18? und
1,45). Die Dimensionen der Eier gehen bei allen Formen ineinander über, so daß selbst
bei whitakeri, minor und bispecularis eine Unterscheidung einzelner Stücke so gut wie
unmöglich ist.
Besondere Angaben über vier Unterarten folgen:
Die Maße für 26 Eier von @. g. hyrcanus (MUSTAFAJEW, Ornitologija 12, S. 240, 14.6):
25,2—31,0 x 20,0— 21,1, G = 7,5—8,1 g erscheinen so klein, daß sie nicht in die Liste
übernommen wurden.
Garrulus glandarius leucotis. Wie die anderen Unterarten, blaß grüngrau oder grün-
blau, manchmal etwas gelblich oder bräunlichgelb getönt, olivbraun oder hellbraun
bis zur Eintönigkeit gefrickelt, seltener bis zur undeutlichen Flatschenbildung mit
mehr Blick auf den hellen Grund. Die wie auch sonst auftretenden schwarzen Kritzel-
linien sitzen so oberflächlich, daß sie leicht abgewaschen werden können (BAKER 1932,
S. 49).
Farrulus glandarius oatesi. Nach BAKER (1932, S. 50) wie leucotis, aber sehr deutlich
brauner und weniger olivgrün wirkend. Ein gelblich-steinfarbenes Gelege hat rötlich-
braune Frickelringbildung an den stumpfen Enden der Eier.
Garrulus glandarius bispecularis. Breiter und mehr geflatscht, oft auf graubraunem
oder graugelbem Grund, was bei dem nahe wohnenden @. lanceolatus selten vorkommt.
Doch sind manche Gelege nach BAKeEr (1932, S.51) von denen dieser Art nicht zu
unterscheiden. Einige Ähnlichkeit nur bei manchen Cissa-Eiern, also bei einer syste-
matisch nicht weit entfernt stehenden Gruppe (Taf. 13, Fig. 4.).
Garrulus lanceolatus. Wie @. glandarius, aber anscheinend noch weniger variabel,
nach BAKER (1932, S. 47) blaß olivbraun oder olivgrün mit blaß sepiabraunen Fleck-
chen. Es sind meist winzige, seltener gut begrenzte und grobe Flecke, fast immer mit
einigen schwarzen Wirrlinien am stumpfen Ende, wo gewöhnlich auch eine Fleckenkranz-
oder Kappenbildung auftritt. Der kleine Strichelhäher legt ein ebenso schweres Ei
und ebenso, viele Eier je Gelege wie der daneben in offenen Wäldern gleicher Höhenlage
des Himalajas lebende Eichelhäher @. glandarius bispecularis. Der Unterschied im
Relativen Eigewicht von 7,6 gegen 5,8%, verdeutlich die größere Leistung des kleineren
Vogels und bedeutet eine bisher unerklärliche Steigerung der Regel, nach der die leich-
teren Verwandten schwerere Eier legen (siehe RG-Liste S. 698). Leider ist über die
Brutdauer nach Arı & RıpLey (1972, S. 200 u. 203) und wohl auch über die Nestlings-
dauer nichts bekannt. — k = 1,31.
Garrulus lidthi (= Lalocitta). Nur viel größer und zum Teil ein wenig dunkler im
Ton der hellblauen Grundfarbe, sonst wie Eier von Sturnus, auch hinsichtlich der
mäßig glänzenden, nicht ganz glatten Schale und der deutlichen, oft in Längsrillen
stehenden, stichartigen Poren. Manche Stücke zeigen einzelne unauffällige, kleine
Fleckchen hellehmbrauner Farbe am breiteren Eiende. Daß der Prachthäher ein
massives Nest in seine Baumhöhle baut und selten frei brütet (gelegentlich kommt
Höhlenbrüten auch bei @. glandarius vor), läßt nach .JAHN (Journ. f. Orn. 90, S. 82,
1942) den Schluß zu, daß er vor nicht zu langer Zeit sekundär Höhlenbrüter geworden
-
Passeriformes: Corvidae 709
ist. (Die dabei entstandene Einfarbigkeit fördert vielleicht die bessere Sichtbarkeit
der Eier in der Höhle. Hrsg.) Zwei Vierergelege in der Sammlung KosBaAyasuı [The
eggs of Japanese birds. Kobe (Selbstverlag) 1940, Textband, und Tori 6, S. 341— 382,
1930]. Ein Vierergelege in Tring, sieben Eier in der Sammlung Ottosson, zwei in der
von Domeier und eins im Museum Koenig, Bonn, stimmen überein. — k = 1,36.
Perisoreus canadensis pacificus (= Cractes). Wie die Nominatform, doch nähern
sich die Eier zum Teil denen der Würger (Lanius) durch reichlichere Zeichnung be-
sonders oben, die auch mehr rötlichbraun sein und (nach BRANDT in: BENT 1946, S. 23)
einen Kranz bilden kann. — k = 1,42.
Perisoreus canadensis canadensis und nigricapillus (= Cractes). Nach BENDIRE
(1895, S. 388 und 393) und anderen amerikanischen Autoren vielleicht ein wenig
dunkler, sonst ganz wie Perisoreus infaustus. Zugespitzt oval (k = 1,40), hellgrau
oder perlgrau, seltener leicht grünlich gehaucht, über und über, besonders am stumpfen
Ende, in verschiedenen bräunlichen Tönen und schieferfarben oder lavendel punktiert
und fein gefleckt, wie mit Pfeffer bestreut, und mit einigem Glanz der glatten Schale.
Dem entsprechen die Stücke in den Museen Berlin und London, auch sechs in Tring.
Die übrigen sechs dort sind aber eine recht gemischte Gesellschaft ganz anderer Typen,
die an Pica, Garrulus, Oyanopica und sogar an Podoces panderi so nahe anklingen,
daß sie wohl kaum zu Perisoreus gehören oder ganz ausgefallene Varietäten von diesem
darstellen.
Perisoreus canadensis capitalis. Wie die Nominatform, scheint aber etwas stärker
gezeichnet zu sein (BEnT 1946, S. 18). — k = 1,38.
Perisoreus canadensis griseus. Nach BoNNEY (briefl.) beschreibt BEnT (1946, S. 31)
die Eier als schmutzig grau, überall mit kleinen braunen Flecken gezeichnet.
Perisoreus canadensis obscurus. ANTHONY (Auk 3, S. 167, 1886) beschrieb ein Fünfer-
gelege als sehr blaß blau mit grünlichem Anflug, dicht braun und lila gezeichnet, am
stumpfen Ende am dichtesten, hier zuweilen auch einige schwarze Haarlinien. Nach
BENDIRE (1895, S. 396) aber ganz wie canadensis. DoE (bei BEnTt 1946, S. 27) findet
die Eier jedoch auffallend, dunkelgrau mit kühner, fast schwarzer und lavendelfarbiger
Zeichnung. — k = 1,31.
Perisoreus infaustus infaustus, ruthenus und rogosowi (= Cractes). 'Trübweißlicher
Grund, leicht grau oder ganz blaß grünlich gehaucht, seltener recht hell bräunlich
rahmfarben. Oft am diekeren Ende dichter stehende, nur mittelgroße und kleinere
Flecke und Punkte vorwiegend nicht sehr dunkler, gelbbrauner und grauer Farbe,
die manchmal auch ziemlich gleichmäßig verteilt sind und immer sehr viel von der
Oberfläche unbesetzt lassen. Schon wegen des stark vorwiegenden grauen Gesamttons
erscheinen mir die Vergleiche von Rey (1905, S.375) und HArTerRT (1903, S. 34) mit
Würger- und Elstereiern (Lanius bzw. Pica) nicht gut, wenngleich es auch solche Stücke
gibt, wobei sich aber die Ähnlichkeit mehr auf ungewöhnliche, lichte, grauweiße und mehr
punktartig gefleckte Eier von Zanius und Pica bezieht. Einzelne Typen von Nucifraga,
Pyrrhocorax, Oyanocorax chrysops und Gymnorkinus kommen Perisoreus hinsichtlich
Zeichnungscharakter und Färbung eher noch näher, auch manche Eier von Clamator
glandarius, die freilich meist größer und rundlicher sind. Auch nach STEGMANN [Zool.
J. (Moskau) 34, S. 1357 — 1378, 1955, Russ.) und NEUFELDT (ebenda 51, S. 1844, 1982)
steht Perisoreus den Hähern der Garrulus-Gruppe ferner als dem Tannenhäher, Nuei-
fraga. — Schalenglanz mäßig, Innenfarbe hell selbgrün. — k = 1,39, 1,37 bzw. 1,41.
(Taf. 13, Fig. 5.)
710 29. Ordnung
Urocissa ornata (— Kitta). Kaum von Cissa chinensis verschieden. Ganz so sind drei
Stick der Sammlung Behrens und zwei bei Nehrkorn z. T. aber etwas weniger dicht
gezeichnet oder nur mit Fleckenkappe am stumpfen Ende. Gewöhnlich ist der Grund
fast verdeckt (Goopwın 1976, S. 199). Eine (grauweiße oder) grünlichweiße Grund-
färbung (ArLı & RırLey 1972, S.206) weicht stark von der bei Cissa chinensis ab.
Nach Lewis gibt es sogar eine bläuliche Tönung des Grundes mit umberbrauner Zeich-
nung, die in der Grundfarbe verläuft. — k = 1,38.
Urocissa caerulea. Das einzige gesehene Stück im Britischen Museum ist wie U.
erythrorhyncha occipitalis; es ist nach Goopwın (1976, S. 196) ein rahmweißes Stück
mit schwach grünlichem Hauch, auf dem dunkelbraune und darunter hellgraue Flecke
und Fleckchen stehen. Nach HacHısuXA & UpacawaA (1951, S.3) grünlicholiv mit
braunen oder schwärzlichen Flecken. — k = 1,36.
Urocissa flavirostris cucullata. BAKER (1932, S. 29f.) findet diese Eier wie die der
Rotschnabelkitta U. erythrorhyncha oceipitalis, jedoch trüber und weniger kühn ge-
zeichnet, im einzelnen blaß oliv oder gelblich steinfarben bis blaß trüb olivbraun
mit gewöhnlich kleinen rötlichbraunen Flatschen und Frickeln überall, aber etwas
mehr am stumpfen Ende. Ein zweiter Typ hat dichte, längliche, braune Flecke, die
vom Grund kaum etwas sehen lassen. v. Treskows und meine von Baker stammenden
Stücke haben auf lehmbraunem Grund recht kräftige, kleine bis ziemlich große dunkel-
nußbraune Flecke, wachsend und dichter und dunkler werdend nach dem dicken
Ende hin, auch einige unscheinbare graue dazwischen. Ebenso ist eines der Nehrkorn-
schen Exemplare, ein anderes aber blaßbräunlichgrau fein und dicht gefrickelt wie
Cissa chinensis. Indessen sind wohl mehr oder weniger grobe und dunkle Flecke von
nicht sehr scharf umrissener Gestalt die Regel bei allen Urocissa-Eiern. — k = 1,46.
Urocissa flavirostris flavirostris. Nach OATES (W. HuMeE, 1889, 1. Bd., S. 16) in Färbung
und Zeichnung wie U. erythrorhyncha occipitalis. BAKER (1932, S. 28) hat von der Gelb-
schnabelkitta hellsteingraue Eier mit leichtem grünen Hauch und trüb erdbrauner
sowie lavendelgrauer Zeichnung, die am dicken Ende dichter ist; auch mit rötlich-
braunen Flecken. Ein zweiter Typ trägt braune längliche Blattern und Flecke. Meist
ohne Glanz. Gestalt in der Regel langgestreckt und kräftig verjüngt am spitzen Ende
(k — 1,49). BAKER besitzt (nur nach 1922, S.44) auch ein erythristisches Gelege,
auf das sich vielleicht die einzige Angabe über Eier dieser Unterart bei ALı & RıPLEyY
(1972, S. 209) bezieht: Blaß rahmfarben, geflatscht mit leuchtend rötlichbraunen
Ober- und lilagrauen Unterflecken.
Urocissa@ erythrorhyncha erythrorhyncha. La ToucHe (Ibis 1900, S. 40), von dem die
meisten Stücke in den Sammlungen stammen, beschreibt sie als blaß grünlich oder
gelblich-lehmfarben mit am stumpfen Ende gehäuften, blassen trübrötlichbraunen
Oberflecken nebst rötlichgrauen Unterflecken, zum Teil in Form von Längsspritzern.
Nehrkorns Exemplare haben verschiedene ölgraue Töne als Grundfarbe, die ziemlich
gleichmäßig mit dunkleren bis schwarzbraunen Flecken, am Pol mehr als lockerer
Kranz, bedeckt ist. BAKERS zwei Gelege ähneln sehr grünlichen Eudynamys scolopacea
und sind deshalb falsch bestimmt, was er selbst später auch fand (1932, S. 26); doch
besitzt Urocissa whiteheadi whiteheadi ähnliche Eier. Die im Britischen Museum ändern
in der Grundfarbe ab von grünlichweiß über lehmfarben bis olivbraun, und die meist
dunkel umberbraunen Zeichnungen sind teils dichte, zarte Spritzer in gleichmäßiger
Verteilung, teils mehr längsgerichtete, gröbere Flecke, die nur locker stehen mit einigen
grauen dazwischen oder an verwischt gezeichnete Elstereier (Pica) anklingend. Ein
aus dem Zoo in Köln stammendes Gelege beschrieb H. G. THIENEMANN (Zool. Garten
N.F. 11, S. 143, 1939) als gelblichweiß mit gleichmäßig verteilten, hell- und dunkel-
Passeriformes: Corvidae 711
braunen Flecken. Seine Maße 30x19 und 31x 18mm wurden wegen der großen
Breiten 18 und 19 mm nicht in die Liste aufgenommen. Korn nur ganz leicht gerauht.
Glanz mäßig, Poren undeutlich. Innenfarbe trübweiß. Vorwiegend dunkle (nach BAKER
1932, S. 25, aber bis blaß erdbraune) Eier. — k = 1,36.
Urocissa erythrorhyncha occipitalis. Teils den Eiern der vorigen Form im Britischen
Museum ähnlich, teils bestimmter gefleckt und geblattert, feiner und gröber in ungleich-
mäßiger Mischung, braun in verschiedenen hellen und dunklen Tönen, eher siena als
oliv, mit einigen kleinen Unterflecken dazwischen. Der Grund ist dabei oft sehr blaß,
fast weißlich, kann aber auch etwas dunkler bräunlich sein. Es sind meist ziemlich
reich und teilweise grob gezeichnete Eier, denen der Elster (Pica) meist nicht ähnlich,
entgegen manchen Beschreibungen. Eins der Nehrkornschen Stücke hat olivbraun
getönten Grund mit nur braunen Flecken, ein anderes bräunlichen Grund mit groben,
dunkelgrauen und braunen. Nach Hume (1873 u. 1889, S. 14) gibt es auch längsgerichtete
Zeichnung. Der geringe Glanz, die nicht ganz glatte Schale und die Poren bieten nichts
Besonderes. [Warum diese westlich der vorigen lebende, sich nach BAkER (1932, S. 27)
auch in der Färbung (vorwiegend lehmfarben mit grober dunkelbrauner Zeichnung)
unterscheidende Rasse und die folgende magnirostris im Durchschnitt bei gleicher
Flügellänge soviel größere Eier legen, ist zur Zeit nicht zu ‚‚erklären‘. Hrsg.] — k = 1,42.
Urocissa erythrorhyncha magnirostris. Aus eigener Anschauung mir nicht bekannt.
BAKER (1922, S.43) beschreibt die Eier ursprünglich nach Funden von Bingham,
Hopwood, Mackenzie und Harington als durchweg erythristisch. Grundfarbe blaß
lachsrot oder rosa steinfarben; Flecke, Frickel und Blattern hellrötlich und blaß-
lilagrau. Dazu fand er (1932, S. 28) neben diesen nun gelblichsteinfarben bis nelken-
rötlich genannten Eiern ein grün gehauchtes Gelege, das heller und viel rötlicher braun
als Eier der vorigen Rasse gefleckt war. Wegen der Eigröße siehe vorige Form. —
42. (Taf. 13, Big. 6.)
Urocissa whiteheadi whiteheadi. Für diese Gattung ein abweichender Typ von grünem
Gesamteindruck. Sechs Eier im Britischen Museum tragen auf blassem, bläulichem
Grund unregelmäßig geformte, kurze Linienzüge und Spritzer hellbrauner Farbe
neben wenigen lilagrauen, kleinen Blattern als Unterflecken. In Tring liest ein ähnliches
mit zum Teil auch längeren Zügen und einem Wischer sowie ein grünes mit kleinen
hellen und verschieden großen dunklen olivbraunen Punkten und Fleckchen, die nicht
sehr dicht, aber ziemlich gleichmäßig verstreut sind. Es kommt spärlich und zart ge-
zeichneten Corvus-Eiern nahe. — k = 1,40.
Oissa chinensis chinensis (= Kitta). Bei den Eiern dieses Genus fehlt in der Regel
jeglicher grüner Ton. Sie sind oft breitoval, zuweilen gestreckter und dann spitzer,
mäßig glänzend, ziemlich glatt, ohne deutliche Poren, und scheinen gelblichweiß durch.
Der trübweiße bis blaßrahmgelbe Grund ist meist ganz gleichmäßig und ungemein
dicht besetzt mit feinen, nie besonders dunklen Frickeln gelblich- oder rostbrauner,
seltener mehr grauer Farbe, die oft am dickeren Ende enger steht. Gröbere und schärfere
Zeichnung scheint nicht [nach Goopwın (1976, S. 199) jedoch wie Fleckenkappe
und blaßgrünlicher Grund selten] vorzukommen. Der Fleckungscharakter liest etwa
in der Mitte zwischen dem gewöhnlichen von Pica und Garrulus, vorwiegend wohl
nach diesem hin. Graue Unterflecke fehlen oder sind kaum sichtbar. — k = 1,32.
(Taf. 13, Fig. 7.)
Cissa chinensis minor. GmBSON-HırL [Bull. Raffles Mus. 21. S. 113, 1949 (1950)]
beschreibt die glatten, aber grobporigen Eier eines Geleges als weiß mit blaß lilagrauer
und „Metallbronze‘-Fleckung. — k = 1,35.
712 29. Ordnung
Cissa thalassina hypoleuca (= Kitta). Nur im Museum Tring drei im Vogelhaus von
Alfred Ezra gelegte Eier mit sehr blassem, grünem Grund (s. auch v. BOXBERGER,
Beitr. Fortpfl. biol. Vögel 4, S. 66, 1928, nach RoTHScHILD). Dies bei Cissa so auf-
fällige Grün ist vielleicht auf Gefangenschaftseinfluß zurückzuführen. — k = 1,39.
Oissa thalassina thalassina (— Kitta). Wie ©. chinensis chinensis (KUSCHEL, Orn. Mon.
ber. 3, S. 153—154, 1895). Ein Stück der Sammlung Kuschel (Museum Dresden) hat
etwas gröberes Korn und besitzt auch einige grauviolette Unterfleckchen neben den rost-
gelben, zarten Oberflecken auf gelblichweißem Grund. Bei Nehrkorns Exemplar erscheint
die Farbe mehr hellolivgrau, klingt also auch in dieser Hinsicht an Garrulus an. HELLE-
BREKERS & HOOGERWERF (1967, S. 161) fanden fast immer einen Fleckenkranz aus
gelblichbraunen bis bräunlicholivfarbenen Fleckchen, der durch dort reichlichere Unter-
fleckchen zum Teil grau getönt ist. Der Grund wird hier als wohl am häufigsten grün-
lich (!) oder graukalkigweiß bezeichnet und sogar über einen bläulichen Hauch berichtet.
Ein fragliches Zweiergelege ist gelblichbraun geflatscht und gefleckt und schon wegen
der Maße 26,8 x 18,2; 28,2 x 18,1 etwas anderes. — k = 1,45.
C'yanopica cyana cooki. Gegenüber cyana hat diese spanische Form viel blasseren hell-
bräunlichgelben, manchmal weißlichgrauen, selten leicht grünlich getönten Grund mit
hauptsächlich auf der dicken Eihälfte stehenden, scharf abgesetzten Punkten und
kleinen, runden Blattern hell- bis sehr dunkel olivbrauner, grauer und violettgrauer
Farbe. Ober- und Unterflecke in etwa gleicher Größe und Anzahl, nicht sehr dicht,
außer hin und wieder in der Polgegend [wo nach MARATScH (1976, S. 135) Kranzbildung
vorkommt], also ohne jede Spur von Ähnlichkeit mit Eiern von Pica und andern Cor-
viden. Die Eier erinnern eher an Lanius nubicus, von der Größe abgesehen. Brutpfleger
von Clamator glandarius. — k = 1,34. (Taf. 13, Fig. 8.)
Uyanopica cyana cyana und pallescens. Mehr oder weniger zugespitzt kurzoval
(k = 1,34) wie bei O'yanoecitta cristata und auch in Farbe sowie Zeichnung den Eiern dieser
Art ähnlich. Grund mitteldunkel, meist trüb graubraun bis fahlolivbraun. Von ihm
heben sich die olivbraunen bis dunkelbraunen Ober- und die grauen Unterflecke, die
mäßig groß sind und nicht sehr dicht stehen, zwar deutlich ab, aber nicht so scharf wie
bei cooki. — k = 1,34. (Taf. 13, Fig. 9.)
Oyanopica cyana koreensis. — k — 1,36.
Uyanopica cyana stegmanni. Meist hell wie bei cooki. — k = 1,36.
Uyanopica cyana swinhoei und kansuensis. Etwa in der Mitte zwischen stegmanni
und den trüb dunkelgrundigen cyana. — k = 1,27 bzw. 1,36.
Uyanopiea cyana japonica. Meistens hell wie bei cooki. — k = 1,33.
Durchscheinende Farbe auch bei den dunklen Stücken aller Rassen trübweiß, im
frischen Zustand leicht gelblich oder grünlich gehaucht. Die nur ganz schwach glänzende
Schale erscheint durch viele seichte Grübchen zart gerauht, so daß die flachen Poren
nur hin und wieder deutlich zu sehen sind.
Dendrocitta vagabunda bristoli und pallida. Wie die Nominatform. — k = 1,28.
(Taf. 13, Fig. 10.)
Dendrocitta vagabunda vagabunda, parvula und vernayi. Wie alle Eier dieser Gattung
eher breitoval als länglich (k = 1,35 bzw. 1,26), ohne scharfe Zuspitzung, meist nur
schwach glänzend, glatt anzufühlen, mit nur wenigen deutlicheren Poren. Blaßgrün
oder weiß, selten ganz hell orange durchscheinend, entsprechend den Grundfarben der
Haupttypen. Diese sind
1. sehr hell grün mit blassen und dunkleren graubraunen, lehmfarbigen und ver-
loschen lilagrauen Flecken;
Passeriformes: Corvidae 713
2. rahmfarben, bräunlich bis selbst rosa und lachsfarben gehaucht mit hell kastanien-
braunen bis dunkelnußbraunen und hell grauen Flecken.
Gelegentlich erscheint der Grund mehr graugrün getönt, die Zeichnung mehr gelb-
braun, siena oder rötlich. Diese ist seltener gleichmäßig verteilt als auf das obere Ei-
drittel beschränkt, wo es zu dichterer Anhäufung, aber kaum einmal zu Kranzbildung
kommt. An sich sind die Flecke vorwiegend mittelgroße rundliche Blattern mit kleineren
und größeren dazwischen, die kleinen lose auf dem spärlicher besetzten, schlankeren
Eiteil, alle ohne eigenartige Form, häufig etwas matt, von den gelegentlich vorkommen-
den, dunkler rotbraun gezeichneten Typen abgesehen. Hier, wie bei den anderen
Dendrocitta auch, wird man vielfach an die verschiedenen Möglichkeiten bei Lanius
collurio erinnert, dessen Eier freilich viel kleiner und entsprechend zarter gezeichnet
sind. Wie bei diesem bleibt immer der bei weitem größte Teil der Oberfläche fleckenfrei.
Die Unterflecke sind zuweilen recht deutlich.
Dendrocitta vagabunda sclateri und saturatior. Wie vorige. — k — 1,42 bzw. 1,42.
Dendrocitta occipitalis cinerascens. Das einzige bekannte Ei wird als grünlichweiß und
ähnlich einem hellen Pica-Ei beschrieben (OGILVIE-GRANT 1912, S. 487). Es ist besonders
am dicken Ende dicht mit kleinen hell- und dunkelumberbraunen sowie lilagrauen
Fleckchen gezeichnet und fällt aus dem Rahmen dieser Gattung heraus. — k = 1,35.
Dendrocitta formosae occidentalis, himalayensis, assimilis, sinica und formosae. Obwohl
BAKER als bester Kenner indischer Vogeleier meint, daß nur sehr wenige Eier von
D. f. himalayensis denen von D. vagabunda pallida gleichkommen und er bei den übrigen
Arten nur himalayensis als Vergleich heranzieht, gelingt es wohl doch nicht, einen
durchgreifenden Unterschied festzustellen. Er fand zum Beispiel (1932, S. 36) ein gelb-
lieh-rahmfarbenes Dreiergelege mit olivbraunen und lilagrauen Flecken, das er ohne
Beobachtung der Vögel als zu himalayensis gehörig bestimmt hätte, obwohl es zu
D. vagabunda gehörte. Die Eier der letzteren Wanderelster scheinen allerdings im ganzen
weniger scharf gezeichnet zu sein, seltener so grobblatterig und dunkel, wie häufig die
der Graubrustbaumelster, zum Beispiel D. f. himalayensis, die oft reicher, gröber und
lebhafter, daher kontrastreicher gefleckt sind. Bei ihnen kann die Grundfarbe sein:
hellsteinfarben, rahmgelb, blaßrötlich, seltener blaß grünlichweiß. Fleckenfarben: ent-
weder blaß siena und graubraun oder dunkler braun bis rötlichbraun. Viele bleiche
Stücke sehen aus wie grobfleckige Rieseneier von Würgern (Laniidae) mit überall lose
verstreuten hell olivlehmfarbenen, mittelgroßen Tüpfeln auf grünlichweißem Grund.
Kontrastreiche, sehr schöne ähneln übergroßen von Lanius collurio mit einem Kranz
heller und dunkler kastanienbrauner, derber Flecke, die dicht gemischt sind mit eben-
solchen dunkel violettgrauen auf warm rahmfarbenem Grund. Ohne schärfere Zu-
spitzung. — Die Nominatform ist nach Yamasaına & YamaDaA (1938, s. HACHISURA
& Upacawa 1951, S. 3) blaß bläulich oder gelblich steinfarben, ziemlich grob blaß oliv-
braun und darunter, ebenfalls grob, gelblichgrau gefleckt, mit Häufung am stumpfen
Ende. — k = 1,31; 1,35; 1,36; 1,32 bzw. 1,40.
Dendrocitta leucogastra. Nach BAKER (1932, S. 38) blaß blaugrün oder graugrün bis
warm rahmbräunlich. Auf bläulichem Grund vdr allem am stumpfen Ende blaß oliv-
braun, sonst rötlich- bis graubraun und dunkler gefleckt. Die meist vorhandenen grauen
Unterflecke verleihen den darüber liegenden oft Violett- oder Purpurtönung. Mehr
D. formosae als D. vagabunda ähnlich. — k = 1,37.
Dendrocitta frontalis. Wie D. formosae, aber nach BAkKER (1932, S. 42), der die Eier
besonders schön und reichlich gefleckt findet, ohne deren blaßrötlichen (lachsfarbenen)
Typ mit braunrötlichen Flecken. — k = 1,36. (Taf. 13, Fig. 11.)
714 29. Ordnung
Dendrocitta baileyi. Ganz wie D. formosae himalayensis (BAKER 1932, S. 55). Nehr-
korns Stück zeigt auf graugelbem Grund große graue Unterflecke in 2 Tönen und
ebenfalls große, hellolivbraune Öberflecke überall, dichter am stumpfen Ende, im
ganzen gröber, flatschiger gezeichnet als gewöhnlich. Aber auch das ist offenbar nur
individuell und wird hin und wieder bei den anderen Arten ebenso gesehen, z. B. bei
Nehrkorns D. vagabunda vagabunda und D. frontalis. — k = 1,33.
Orypsirina temia. Vorwiegend wie kleine Pica-Eier. Ziemlich stark zugespitzt am
einen Ende (k = 1,38), grauweiß, dicht mit aschfarbenen und gelbbräunlichen Punkten
und Sprenkeln bedeckt, die am stumpfen Ende zusammenfließen und den Grund hier
fast völlig bedecken; dadurch erinnern die Eier im Gesamtcharakter zum Teil an lehm-
braune, feinfleckige und auch mehr punktierte Alauda-Eier. So sind 28 Exemplare aus
Pegu im Britischen Museum, zum Teil genau wie das oben beschriebene Dendroeitta
oceipitalis cinerascens-Ei, d. h. mit grünlichweißem Grund. Dagegen machen die dortigen
5 Tonkin-Stücke eher den Eindruck von hellen Dendrocitta mit kurzovaler Gestalt und
grauen neben braunen Flecken. Diese Schalen messen 24,6— 25,8 x 20,0 = 0,28 g, jene
22,4 x 17,2 = 0,23 g bis 27,6 x 19,0 = 0,27 g. Im Dresdener Museum liegen Alauda-
und Cyanocoraxz yncas-artige aus Java, die lehmfarben und hellbraun fein gefleckt
sind (24,2—26,2 x 17,5— 19,0 = 0,23—0,27 g), im Einklang mit NEHRKORN, dessen
Abbildung in seinem Katalog (1910, Taf. 1, Fig. 3) aber schlecht, da viel zu gelb, ist.
Java-Eier tragen nach HELLEBREKERS & HooGERWERF (1967, S. 162) bis dunkel oliv-
braune dichte Fleckung, manchmal mit dunklerer Zone am stumpfen Ende; dies gilt bei
spärlicher Fleckung auch für indische Eier (BAKER 1932, S. 44) mit rahmfarbenem
Grund. Goopwis (1976, S. 218) führt unter anderem grünlichgelbbräunlichen Grund an.
BAKEr (1932, S.44) nennt die Eier kurzoval, was aber für die Mehrzahl auch nach
den von ihm gegebenen Maßen nicht gilt.
Urypsirina cucullata. Wie kleine Ü. temia, teils heller, teils rötlicher, von Dendrocitta-
Charakter. — k = 1,32.
Pica pica fennorum und pica. Bei allen Formen dieser Gattung dieselben Farben und
Zeichnungscharaktere, die im allgemeinen recht konstant sind, gelegentlich aber doch
erheblich abändern. Gewöhnlich ist die Grundfarbe blaßgrünlich oder lehmfarben, sehr
dicht bedeckt von zarten, ziemlich gleichgroßen, gleichmäßig überall verteilten, am
stumpfen Ende dichteren und etwas gröberen, nicht scharf begrenzten Fleckchen mit
einiger Längsrichtung (Frickel) in verschiedenen dunklen, bräunlichgrauen und oliv-
braunen Tönen, untermischt mit nicht immer ohne weiteres sichtbaren grauen oder
violetten Unterfleckehen. Gesamteindruck bräunlich, bei andern aber ausgesprochen
hellblaugrün mit nur ganz blassen, weitläufig stehenden Fleckchen, die gegen die
Grundfarbe ganz zurücktreten. Sind die dunklen Flecke größer, so entstehen auf grün-
lichem Grund Corvus-artige Eitypen, bei mehr bläulichgrauem Grund und feiner Zeich-
nung Perisoreus- und Nucifraga-ähnliche, aber ohne deren scharf begrenzte Fleckung.
[Bei ganz dichter Fleckung kann nach MArATscH (1976, S. 133) die Grundfärbung fast
völlig verdeckt werden, feinst und dicht gefleckte Eier können an Garrulus glandarius
erinnern und auch ungefleckt blaue (nach JouURDAIN) vorkommen. MARATScH (1976,
S. 132) gibt ferner grünlich- oder bläwlichweiße sowie gelblichgrüne Grundfärbung und
an Varietäten graubraune sowie hell graugrüne in verschiedenen Abtönungen, GOODWIN
(1976. S. 177) auch grünlichgelb-rahmfarbenen Grund an. Hrsg.] Absonderliche, an
Perisoreus infaustus erinnernde Stücke sind auf grauweißem Grund locker mit ebenso
vielen deutlichen grauen wie bräunlich schwarzen groben Punkten besetzt, die gleich-
mäßig gemischt sind. Öfter wohl kommen Corvus monedula und Pyrrhocorax ähnliche
Eier vor. Die durchscheinende Farbe schwankt, entsprechend der äußeren von vor-
wiegend grün bis selten erangebraun in blassen Tönen. Korn wie bei Corvus, nur zarter,
Passeriformes: Corvidae 715
Poren ziemlich grob, Schalenglanz mäßig, mit der Zeit vergehend. — k = 1,40/1,36
bzw. 1,41.
Pica pica galliae. Wie vorige. Die Maße (VERHEYEN 1967, S. 320) aus den Nieder-
landen: Dj = 34,8 x 24,7 = 0,63 g (29,9—41,9 x 22,6— 26,4 = 0,50—0,75 g) werden
nicht in die Liste iibernommen, da nach Prrers (1962, S. 251) dort wohl eine Über-
sangspopulation zwischen pica und galliae wohnt. Auch bleiben die griechischen galliae-
Eier dort von den westeuropäischen getrennt. — k — 1,45/1,42.
Pica pica melanotos. Wie pica. Oft Brutpfleger von Olamator glandarius. — k = 1,4i.
Pica pica mauritanica. Wie für pica aus England (JOURDAIN) ein erythristisches Stück
nachgewiesen (KRICHELDORFF, Zeitsch. Ool. 13, S. 10, 1903, siehe LINSDALE, Pacif.
Coast Avifauna 25, S. 99, 1937, eine reiche Quelle für weitere Befunde). Wie pica. —
2 Al. (Taf. 13, Fig. 12.)
Pica pica bactriana, hemileucoptera und jankowskir. Wie pica. — k = 1,45; 1,40 bzw.
1,37.
Pica pica sericea. V. JORDANS & NIETHAMMER (1940, S. 109) hielten die Eier für ver-
schieden von der Nominatform, BAKER (1932, S. 23) für deutlich blasser als die von
bactriana, was aber wohl nicht zu bestätigen ist. Brutwirt für EHudynamys scolopacea. —
k 1,46. 2
Pica pica anderssoni. Wie pica, aber etwas länglicher. — k — 1,48.
Pica pica bottanensis. Große grüne und grünlichbraune Eier, die Dr. E. Schäfer in Süd-
Tibet in Menge sammelte, erreichen zum Teil riesige Dimensionen und sind dann nicht
von Eiern der Krähen zu unterscheiden, stammen aber aus Gebieten von Gyantse und
Schigatse in Tibet, wo es keine Krähen Corvus corone und macrorhynchos gibt. —
ko.
Während die durchschnittliche Flügellänge für erwachsene Elstern (nach VAURIE,
Birds of the palearctic fauna. 2. Order Passeriformes. London. Witherby. 1959, S. 149
bis 152) von 253 mm bei der größten Rasse bottanensis über 207 mm bei sericea, 204 bei
fennorum und 190 bei pica auf 163 bei mauritanica, also auf 64%, abnimmt, fällt das
Eigewicht ganz entsprechend von 14,1 über 10,8, 10,6 und 9,9 g auf 9,4 g und damit auf
67% der schwersten Rassenserie. Das Relative Eigewicht ist leider nicht so genau
bekannt.
Pica pica hudsonia. Wie pica. Nach BENDIRE (1895, S. 351) sind hier die in der
Grundfärbung grünlichen Typen nicht die häufigsten, sondern blaß oder schmutzig
graue. Er fand unter den 201 Eiern des U. S. National Museums auch kurz ovale, rund-
liche, elliptische und länglich ovale Stücke. — k = 1,42.
Pica nuttalli. Nach LinspALe (1937, S. 98) wie P. p. pica, obwohl BENDIRE (1895,
S. 355) sie für öfter grünlicher als hudsonia hält. KAEDnıe (Oologist 14, S. 16, 1897, aus
LINSDALE, S. 99) zählt unter den Abweichungen in der Form kurze, runde und lange,
elliptische Eier auf, wie sie ja bei vielen Arten vorkommen. — k = 1,38.
Zavattariornis stresemannt. In einem unten über 0,5 m breiten Dornzweig-Kegelbau,
an dessen abgestumpfter Spitze in der noch 0,3 m breiten Hülle der etwa 7 cm weite
Eingang zur Nestkammer liegt, fand Benson (1946) bis 6 glatte, etwas glänzende Eier,
die auf blaß rahmfarbenem Grund blaß lila Flatschen vom Aussehen der Unterflecke
bei den meisten Corviden-Eiern trugen und fast eine Ringbildung am stumpfen Ende
zeigten. Aber die in der Sammlung des Western Foundation of Vertebrate Zoology in
Los Angeles liegenden Eier gleicher Quelle waren anscheinend nur verschmutzt; denn
Kırr (briefl. 1980) fand sie ungefleckt trübweiß (und oval). — k = 1,38.
716 29. Ordnung
Podoces hendersoni. Nach DRESSER (Ibis 1905, S. 149) blaßgrüngrau, fein blaßrot
gefleckt, an manche Eier von Turdus viscivorus erinnernd. Er sah sie nur im Museum
Leningrad. Von dort tauschte Alexander Koenig ein Exemplar ein, das erheblich anders
aussieht. Mit am stumpfen Ende etwas dichteren und ein wenig größeren, vorwiegend
dunkelolivbraunen Fleckchen, sonst nur kleinen, locker stehenden auf hell gelbgrün
getöntem, rahmfarbenem Grund erinnert es an kleine Elstereier (Pica) durchschnitt-
lichen Typs, ähnlich, nur größer, als Koenigs vier P. panderi-Eier. Nach DEMENTIEW
(1954, S. 95) wie die der nächsten Art. PrEcHock1 (1972, S. 82) beschreibt sie ebenfalls als
mattglänzend und schmutzig olivfarben mit zahlreichen hellgrauen und dunkleren sepia-
braunen Flecken verschiedener Größe, die am stumpfen Ende etwas dichter stehen —
deutlicher gefleckt als das Ei in Kornıss Katalog (1932, Taf. IX, Fig. 4) abgebildete,
dessen der Abbildung entnommenen Maße Schönwetters (31,2 x 21,8 mm) wegen ihrer
Höhe nicht in die Liste übernommen wurden. — k = 1,42.
Podoces biddulphi. Die fünf Eier im Britischen Museum von drei Gelegen, die Ludlow
aus Khotan in Chinesisch Turkestan erhielt, fand ich recht übereinstimmend rahm-
farben bis leicht grünlich gehaucht, dicht zartgefleckt in olivbraunen Tönen mit un-
scheinbaren grauen Unterfleckchen dazwischen, im Zeichnungstyp mehr Elster (Pica)-
als Amsel (Turdus merula)-artig. In der Größe wie das Koenig-Ei von P. hendersoni,
also erheblich größer als P. panderi und P. pleskei. — k = 1,43.
Podoces panderi. Die in Saxaulbüschen stehenden und oft überdachten, aber seltener
auch am Ende von Erdhöhlengängen gebauten Nester des Saxaulhähers enthalten über-
raschenderweise keine ganz oder fast einfarbigen Eier. Diese erinnern vielmehr zum Teil
an dunkler gefleckte, grünliche von Lanius minor, sind, abgesehen von der Größe, auch
manchen blassen, spärlich gezeichneten der Nebelkrähe (Corvus corone cornix) ziemlich
ähnlich. Andere dieser im ganzen hellen Eier stehen etwa in der Mitte zwischen Pica und
Perisoreus. Der vorwiegend blaß bläulichgrüne Grund zeigt sich manchmal leicht grau
gehaucht (nach SoPpJEw, Isw. Ak. Nauk Turkm. Biol. 4, S. 56—62, 1964, im frischen
Zustand), seltener mehr gelbgrün. Meist locker stehende, kleine und mittelgroße Flecke
von braungrauer bis dunkel olivbrauner Farbe drängen sich am stumpfen Ende zu-
sammen und sind mit zurücktretenden, lilagrauen Unterfleckchen gemischt. Auch
Stücke mit gröberen Blattern in der Polgegend kommen vor, seltener kleinfleckige mit
mehr gleichmäßiger Verteilung. Jedenfalls kann man oologisch von Corviden-Ähnlich-
keit sprechen, obwohl der Vogel als solcher nicht eben viel davon zeigt. Eigestalt, Korn
und Poren bieten nichts Besonderes. Die durchscheinende Farbe ist blaß gelbgrün.
[Der häufige Hinweis auf Pica-Eitypen dürfte den Abstand von Podoces zu Nueifraga
vergrößern helfen, den auch STEGMANN (l.c.) und NEUFELDT (l.c.) betonen, zumal
Nucifraga, wie auch bei PETERS, näher Pyrrhocorax und Corvus steht (so auch im Corvus-
Stammbaum von JoLLIE, Biologist 60, S. 80, 1978); aber der Oologe kann hier kaum
entscheidender Helfer des Systematikers sein. (Hrsg.)] — k = 1,35.
Podoces pleskei. DRESSER (Ibis 1905, S. 152) beschreibt seine Exemplare als blaß
grüngrau, schmutzigbraun über die ganze Oberfläche gefleckt, an gewisse Lanius
excubitor anklingend. Auf seinen beiden im Ibis 1908 (Taf. 10, Fig. 4 u. 6) gegebenen
Abbildungen erscheint der Grund mehr bräunlich getönt, die Zeichnung unregelmäßig
verteilt, entsprechend den Angaben HArTERTS: lehmgelb mit graubraunen und oliv-
braunen Flecken und Punkten. — k = 1,39.
Pseudopodoces humilis humilis und saxicola. Als diese ungefleckt milchweißen Eier von
Taneres Sammler Rückbeil erstmalig zu Oologen kamen, wurden sie stark bezweifelt;
stimmten sie doch mit denen von Montifringilla nivalis überein, die im selben Gebiet
und auf gleiche Weise in Erdhöhlen am Ende langer Röhren liegen. Nachfolgende
Passeriformes: Corvidae zit
Funde durch Steen, Ludlow und auch die neueren durch Beick und Schäfer beseitigten
alle Bedenken. Meine Versuche, durchgreifende Unterschiede gegenüber vergleichbaren
Eiern zu finden, waren erfolglos. Die Maße und Gewichte der von Beick in Kansu
gesammelten Jynx torquilla- und Pseudopodoces-Eier stimmen überein. Nur das durch-
schnittliche Schalengewicht ist beim Wendehals höher (0,215:0,180 g). Unter der Lupe
zeigt sich das feine Korn bei Jynx gleichförmiger. Die glänzenden Granulationen sind
ebenso groß wie die matten Täler zwischen ihnen, bei Pseudopodoces merklich kleiner
als die Senken; doch gibt es Übergänge. Gegenüber den dortigen Montifringilla (0,195 g)
fallen selbst diese unbedeutenden Verschiedenheiten fort. Auch Eigestalt, Schalenglanz
und die weiße Innenfarbe stimmen bei allen diesen überein. Zum Verdacht auf die
Zugehörigkeit zu den Sturnidae (BoREcKY, Bull. Brit. Orn. Club 98, S. 36f., 1978) kein
Kommentar seitens der Oologie. — k bei beider: Formen = 1,39. (Taf. 13, Fig. 13.)
Nucifraga columbiana. Anscheinend zeigt sich öfter als bei allen eurasischen Tannen-
hähern (N. caryocatactes) eine deutlicher getönte (nach Bent 1946, S. 313, blaß grüne
bis grünlichweiße) Grundfarbe und etwas gestrecktere Gestalt. Auf dem grünlichen
Grund nach BENT gleichmäßig und spärlich kleine blaßbraune, olivfarbene, graue oder
gelbgraue Fleckung, manchmal mit Häufung am stumpfen Ende. Das alles reicht aber
zur Unterscheidung nicht aus. — k = 1,38.
Nueifraga caryocatactes caryocatactes, macrorhynchos, rothschildi, japonica, macella und
hemispila. Die immer dünnschaligen Eier aller Rassen sind sehr wenig pigmentiert und
von ganz gleichem Charakter. Gestalt zuweilen breitoval, oft länglicher, einseitig mehr
oder weniger zugespitzt (k = 1,35; 1,31; 1,40; 1,38; 1,29 bzw. 1,35). Grundfarbe immer
ganz blaß grünlich- oder bläulich grauweiß. Sehr hell sind in der Regel auch die meist
recht spärlichen gröberen Fleckchen von kaum 1mm Durchmesser, die auf anderen
Stücken zahlreicher, dafür aber in bloße Punkte aufgelöst erscheinen. Ihre Farbe ist
vorwiegend lehmfarben oder blaßolivbraun, nur die Punkte kommen nicht selten dunkel
grünlichbraun vor. Da und dort einige blaßgraue oder lilagraue Unterflecke, die auch
ganz fehlen können. Am stumpfen Ende steht die Zeichnung oft ein wenig dichter.
[Nach MArATscH (1976, S. 137) kommt dort Kranzbildung und kommen sonst braune
Schnörkel und Haarzüge wie bei Garrulus vor. Der Grund kann nach ihm manchmal
satter bis tief grün sein.] Schalenglanz meist mäßig, aber bei fast weißem Grund beinahe
ohne jede Fleckung auch stärker gesehen. Von manchmal ähnlichen Elstern- (Pica-) und
Dohlen- (Corvus monedula-) Eiern zu unterscheiden durch deren schlankere Gestalt,
dunklere Farben, gröbere oder dichtere Zeichnung, bei Corvus monedula vor allem durch
höheres Schalengewicht, denn nur etwa 20% der Nucifraga-Eier übersteigen 0,60 g.
Auch bei Corvus monedula, O. splendens, Pica pica und Perisoreus infaustus fanden sich
gelegentlich solch blasse punktfleckige Eier, die jedoch bei Dohle und Krähe fast stets
erheblich schwerere, beim Unglückshäher (Perisoreus) immer leichtere Schalen besitzen
trotz Übereinstimmung der Dimensionen i in derartigen Ausnahmefällen. Das sehr zarte
Korn und die bläulich weiße Innenfarbe sind weitere Unterscheidungsmerkmale gegen-
über den andern, hier genannten Arten mit vorwiegend deutlich grün durchscheinenden
Schalen. Überdies sieht man im durchfallenden Licht bei diesen mehr Flecke, als von
außen an der Oberfläche, bei Nucifraga aber nicht, weil hier die Zeichnung nur ganz
oberflächlich aufgetragen ist, nicht zum Teil auch innerhalb der Kalkschale liegt. _
Eine schöne Serie dieser nicht leicht erhältlichen Eier sammelte Otmar Reiser in Bosnien,
sie befindet sich jetzt im Wiener Museum. (Taf. 13, Fig. 14.)
Pyrrhocorax pyrrhocorax pyrrhocorax. Wie die folgende Form. — k = 1,41. (Taf. 13,
Fig. 15.)
Pyrrhocorax pyrrhocorax erythrorkamphus. Der Zeichnungstyp variiert wie bei klein-
fleckigen Corvus-Eiern, aber die Grundfarbe ist meist trübweiß, höchstens rahmfarben,
718 29. Ordnung
selten leicht grünlichgrau oder hell bräunlich gehaucht. Die in der Regel am dickeren
Ende etwas gröberen und dichteren, manchmal fast einen Ring oder eine Kappe bilden-
den Flecke sind nie sehr groß, wenn nicht gelegentlich einige zusammenfließen. Manch-
mal sind es nur Punkte, dann und wann auch einmal gleichmäßiger verteilte, mittel-
große Flecke. Dabei herrschen mitteldunkle umberbraune und graubraune, nach GooD-
wı (1976, S. 154) auch rötlichbraune Töne vor. Die Oberflecke sind mehr oder minder
deutlich gemischt mit blaßlilagrauen, bei blaß rosabräunlichem Grund nach GOODWIN
(1976, S. 154) mit lila Unterflecken, die zuweilen dominieren, besonders neben gelegent-
lich mehr schiefergrauen Oberflecken. Diese kommen scharf markiert und auch ver-
wischt vor. Am stumpfen Ende ab und zu nach MARATSscH (1976, S. 144) schwarzbraune
Haarlinien. Immer sind es ziemlich helle Eier, denen insbesondre die grünen und dunkel
olivgrünbraunen Töne der Corvus-Eier vollkommen fehlen. Wie bei diesen wechselt die
Gestalt zwischen breitoval und schlank. Der Glanz ist recht gering, oder er macht sich
überhaupt nicht bemerkbar. Die Schale fühlt sich leicht rauh an und scheint gelbweiß
bis rötlichgelb durch. — k = 1,43.
Pyrrhocorax pyrrhocorax barbarus. BANNERMAN (1963, S. 186) gibt unter anderem
glänzend gelblichweißen Grund an und weist auf die besondere Kleinheit dieser Eier
hin, die aber wohl auf zu wenig Maßen beruht. — k = 1,36.
Pyrrhocoraz pyrrhocorazx baileyi. PRAED & GRANT (1955, S. 679) beschrieben unter dem
hier auch barbarus umfassenden Namen der vorderasiatischen docilis grünlichweiße
Eier mit braunrötlichen Flecken und Flatschen sowie schwachen purpurfarbenen Unter-
flecken, aber anscheinend liegen keine Eier aus Abessinien vor. — k = 1,38.
Pyrrhocorax pyrrhocoraz docilis. Nach HüE & ETCHECOPAR (1970, S. 531) kommt auch
ein ganz weißes, also ungeflecktes, Ei vor, anscheinend bei dieser Rasse der Alpenkrähe.
Nach DEMENTIEw (1954, S. 98) grau- (zuweilen weiß-) gelb oder graugrün mit gelblich-
braunen Flecken.
Pyrrhocorax pyrrhocorax himalayanus. Nach BAKER (1922, S. 69) matter und mehr
bräunlich als die von erythrorhamphus, aber die von Schaefer in N-Sikkim und Tibet
gesammelten Stücke waren gerade weiß mit fast nur hell- und dunkelgrauen Flecken,
so daß die Variation wohl bei allen Rassen gleich ist. Am stumpfen Ende ist gelegentlich
[nach BAKER 1932, S. 56, und (nach OsmAsTon) aus ALI& RıPLey 1972, S. 240)] fast ein
Fleckenring oder eine Kappe festzustellen. — k = 1,48.
Pyrrhocorax pyrrhocorazx centralis und brachypus. Wie vorige. — k = 1,43 bzw. 1,49.
Pyrrhocorax graculus graculus. Nach Rey (1905, S. 369) müssen die Flecke der Alpen-
dohleneier manchmal in Längsrichtung verlaufen und der grünliche Grund öfter als bei
der Alpenkrähe auftreten. Dagegen betont SCHÖNWETTER (MS) die Übereinstimmung
mit P. pyrrhocorax erythrorhamphus, abgesehen von geringerer Größe bei graculus.
Als Beispiel für die nahen Beziehungen zwischen den Eifärbungen auch weit von-
einander abstehender Corviden sei ein von Krüper erhaltenes Ei in meiner Sammlung
erwähnt, das durch bräunlichgrauen Grund mit ausgedehnten grauen Flatschen als
Unterflecken und schwarzbraunen, kleinen und großen Punkten ganz den hierdurch
charakterisierten, eigenartigen Typ von Calocitta formosa colliei imitiert. Ein ähnliches
von Corvus corone cornix fand v. Treskow (Museum Berlin). — k = 1,43.
Pyrrhocorax graculus digitatus. Wie vorige, aber größer. — k = 1,38.
Ptilostomus afer. Glanzlos, leicht rauhschalig und entweder einfarbig blaßblau oder
spärlich mit hellen und dunklen purpurgrauen Punkten und Blattern. Da sich diese
Beschreibung durch BoUGHTOX-LEIcH (Ibis 1932, S. 469, Taf. V, Fig. 9) auf 30 von ihm
Passeriformes: Corvidae 719
gesammelte Stücke aus Ilorin (Nigeria) bezieht, scheint hier der sonst kaum bekannt
gewordene Fall vorzuliegen, daß Oberflecke regelmäßig fehlen, nur graue Unterflecke
vorkommen. [Dem widerspricht die das Bild wesentlich ergänzende, ebenfalls in N-
Nigeria (von Serle) gesammelte Serie (Ibis 1940, S. 30): Glatt und ziemlich glänzend,
sehr blaß grünlichblau und immer (bei 7 Stücken) in einer Kappe an einem der beiden (!)
Enden mit groben graulila Unter- und gelbbraunen Oberflecken, die auf vier Fünfteln
der Oberfläche fast völlig fehlen. Ob die Fleckenarmut bzw. -losigkeit auf verwandt-
schaftliche Beziehungen dieser Piapia zum Zavattari-Vogel Zavattariornis hinweist? Da
der Zugang zum Nest manchmal durch Dornzweige verschlossen ist, könnte natürlich
auch konvergente Aufhellung der Eier bei beiden ‚„„Höhlenbrütern‘“ vorliegen. Hrsg.] —
k=1,40.
Corvus monedula soemmeringii und monedula (= Coloeus). Von den Eiern der sehr
einheitlichen eigentlichen Gattung Corvus, die besonders bei (©. corax (S. 726) und
C. corone corone (S. 723) besprochen werden, sind Dohleneier auffallend verschieden durch
den stärkeren Kontrast zwischen der blassen Grundfarbe und der spärlichen, dunklen
Zeichnung. Diese besteht immer in fast runden, ganz scharf abgesetzten und stets
einzeln stehenden Punkten und runden Blattern dunkel sepiabrauner, beinahe schwarzer,
selten hellerer, bis olivbrauner (dies nach MaraAtscH 1976, S. 130) Farbe. Sie stehen in
der Regel weit auseinander, dichter nur, wenn sie sehr feinfleckig sind, sind gleichmäßig
verteilt oder nach dem breiteren Ende zu gehäuft und da auch oft gröber. Dazwischen
etensolche blaugraue oder grauviolette Unterflecke, die teils sehr deutlich, teils kaum
sichtbar sind. Die Grundfarbe ist schön hellblaugrünlich [nach MarArtsc# (1976, S. 130)
auch blaß grünlichblau oder hellblau], neigt aber sehr zum Ausblassen in bläulich-
grauweiße Töne. Die glänzende Schale ist schon mit bloßem Auge als nicht ganz glatt zu
erkennen. Die reichlichen Poren sind ziemlich grob. Innenfarbe blaßgrün. Abweichende
Eier scheinen selten vorzukommen; manche stehen Nucifraga nahe. Eins meiner Gelege
hat auf trübgrauem Grund nur am stumpfen Ende einige sehr große runde Blattern von
hellolivbrauner und bleigrauer Farbe, sonst fast keine Zeichnung. Ungefleckte Exemplare
sind noch seltener.
[Die helle Färbung paßt zum fast ausschließlichen Nisten in Höhlen und schadet
offenbar beim gelegentlichen Brüten in alten Offennestern, zum Beispiel von Corvus
frugilegus, oder am Boden nicht. HoLyoak (Bull. Brit. Orn. Club 89, S. 159, 1969) fand
bei Tring Dchleneier, die er dunkel gefärbt hatte, zerbrochen wieder, führt das auf
Zertreten durch die Eigentümer zurück und die helle Färbung auf Selektion bei diesem
Höhlenbrüter. Für die Beibehaltung der Gattung Coloeus (monedula und dauuricus)
sprechen auch die neuesten Befunde aus der Anatomie des Verdauungstraktes (OEL-
HAFEN, Orn. Beob. 78, S. 37, 1981) und anderes (z. B. JOLLIE, Biologist 60, S. 104, 1978).
Die phylogenetischen Ansichten über die ganze Gattung Corvus werden noch lange
auf Übereinstimmung warten müssen, wie ihre Verschiedenheit schon in den (wenigen)
Systemen bei Prrzrs (1962), GoopwIn (1976, S. 66—73) und WoLTteErs (1977, 8.
221— 226) sowie im Stammbaum bei JoLLIE (1978, S. 80) beweisen, und die Oologie
scheint dabei kaum ein Wort mitsprechen zu können (siehe unten (©. c. corax, S. 726).
— k=1,39.
Corvus dauuricus (= Coloeus). Wie vorige. Diese Art baut auch Nester zum Frei-
brüten. — k = 1,40. (Taf. 14, Fig. 1.)
Corvus splendens zugmayeri, splendens und protegatus. Vorwiegend mehr blaugrauer
oder bläulichgrüner Grund, auch im ganzen heller und feiner gefleckt als bei ©. corone,
aber weniger oft weißlich als bei ©. monedula. Die Art ist kein Höhlenbrüter (LamBa,
Journ. Bombay Nat. Hist. Soc. 60, S. 124f., 1963) und häufig Wirt von Eudynamys
scolopacea. — k = 1,46; 1,43 bzw. 1,36. (Taf. 14, Fig. 2, Eudynamys Fig. 3.)
720 29. Ordnung
Tafel 13
Eier von Angehörigen der Familie Rabenvögel
(Namen nach R. KREUGER, Maße nach und Aufnahmen von J. TERHIVUo aus dem Museum Oologicum
R. Kreuger der Universität Helsinki, briefl. 1981; Maßstab etwa 1:1.)
Fig. 1. Cyanocitta stelleri azieca (S. 701). Staat Puebla (Mexico). 33,5 x 22,9 = 0,468 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 31,8 x 22,3 = 0,439 g; 33,2 x 23,5 = 0,486 g; 33,4 x 23,0 = 0,458 g.) Colleetio
R. Kreuger 11162.
Fig. 2. Aphelocoma coerulescens sumichrasti (S. 702). Staat Puebla (Mexico). 27,7 X 20,5 = 0,364 g.
(Weitere Eier dieses Geleges: 26,9 x 20,8 = 0,349 g; 27,6 x 20,4 = 0,345 g; 27,6 x 20,6 = 0,352 g.)
Collectio R. Kreuger 11161.
Fig. 3. Cyanocoraz cyanomelas (S. 705). Chaco (Paraguay?). 35,0 x 24,3 = 0,637 g. Collectio R.
Kreuger (,,C. caeruleus‘‘) 11160.
Fig. 4. Garrulus glandarius fasciatus (S. 707). Andalusien. 32,4 x 23,5 = 0,547 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 32,5 x 23,8 = 0,552 g; 33,3 x 23,5 = 0,549 g; 34,0 x 23,5 = 0,564 g.) Collectio
R. Kreuger 5743. -
Fig.5. Perisoreus i. infaustus (S. 709). Muonio (Finnland). 30,2 x 22,5 — 0,408 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 29,8 x 21,9 = 0,360 g; 29,9 x 22,1 = 0,390 g; 29,9 x 22,1 = 0,427 g.) Collectio
R. Kreuger 188.
Fig. 6. Urocissa erythrorhyncha magnirostris (S. 711). Burma. 33,1 x 24,7 = 0,689 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 32,4 x 23,1 = 0,578 g; 32,5 x 23,9 = 0,574 g; 32,9 x 24,9 = 0,641 g.) Collectio
R. Kreuger 2124.
Fig. 7. Cissa ch. chinensis (S. 711). Khasia-Berge (Assam). 29,6 x 22,9 = 0,446 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 30,8 x 22,2 = 0,446 g; 30,9 x 21,7 = 0,442 g; 31,2 x 23,3 = 0,470 g.) Collectio
R. Kreuger 2133.
Fig. 8. Cyanopica cyana cooki (S. 712). Huerta del Rey (Spanien). 26,9 x 20,9 = 0,336. (Weitere
Eier dieses Geleges: 26,0 x 20,3 = 0,323 g; 26,9 x 19,7 = 0,310 g; 27,5 x 20,8 —= 0,350 g; 28,1 x 19,5
= 0,304 g.) Collectio R. Kreuger 2114.
Fig. 9. C'yanopica ce. cyana (S. 712). Daurien (SO-Sibirien). 26,9 x 20,0 = 0,350 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 25,1 x 19,8 = 0,282 g; 26,3 x 19,6 = 0,305 g; 26,6 x 20,3 = 0,347 g; 27,4% 19,6
— 0,350 g.) Collectio R. Kreuger 8377.
Fig. 10. Dendrocitta vagabunda pallida (S. 712). Lahore (Indien). 28,6 x 20,9 = 0,364 g. (Weitere
Eier dieses Geleges: 27,6 x 21,1 = 0,367 g; 28,0 x 20,7 = 0,374 g; 28,5 x 21,0 = 0,377 g.) Collectio
R. Kreuger 5901.
Fig. 11. Dendroecitta frontalis (S. 713). Assam. 25,5 x 20,6 = 0,327 g. (2. Ei dieses Geleges: 25,9 x 20,0
—= 0,309 g.) Colleetio R. Kreuger 2126.
Fig. 12. Pica pica mauritanica (S. 715). Algerien. 31,3 x 24,1 = 0,554 g. (Weitere Eier dieses Ge-
leges: 31,9 x 22,7 = 0,560 g; 31,9 x 23,4 = 0,528 g; 32,5 x 23,7 = 0,553 g; 35,0 x 22,9 = 0,483 g.)
Collectio R. Kreuger 5744.
Fig. 13. Pseudopodoces humilis sazicola (S. 716). Dsiling (NO-Tsinghai, China). 22,1 x 16,2 = 0,1808.
(Weitere Eier dieses Geleges: 20,4 x 16,1 = 0,173 g; 22,1 x 16,0 = 0,180 g; 22,5 x 16,3 = 0,181 g;
22,7 x 16,4 = 0,184 g; 22,7 x 16,4 = 0,183 g; 23,1 x 16,3 = 0,184 g.) Collectio R. Kreuger 16003.
Fig. 14. Nueifraga c. caryocytactes (S. 717). Schweizer Jura. 31,6 x 23,6 —= 0,464 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 32,1 x 24,1 = 0,386 g; 33,1 x 24,4 = 0,525 g; 33,4 x 25,1 = 0,476 g.) Collectio
R. Kreuger 6379.
Fig. 15. Pyrrhocoraz p. pyrrhocoraz (S. 717). Insel Valentia (Irland). 40,5 x 27,8 = 0,888 g. (Weitere
Eier dieses Geleges: 39,6 x 27,8 = 0,919 g; 40,0 x 27,9 = 0,895 g; 40,2 x 29,4 = 1,067 g; 41,4
x 27,9 = 1,055 g.) Collectio R. Kreuger 2503.
Sn
NE
Rn Litas
Passeriformes: Corvidae 721
Corvus splendens insolens. Nach BAKER (1932, S. 19) die dunkelste der Glanzkrähen-
formen. — k = 1,39.
Corvus moneduloides (= Physocorax). Kleiner, sonst ganz wie blasse Corvus frugilegus,
hellgrünlichblau (nach Goopwın 1976, S. 121, blaß bläulichgrün bis grünlichweiß) mit
reichlichen graubraunen Punkten und kleinen Flecken unregelmäßiger Gestalt, besonders
am stumpfen Ende. Die beiden im Britischen Museum haben umberbraune Zeichnung
in zwei Tönen, Nehrkorns Stücke sehr blasse Flecke, offenbar nur individuell. —
k = 1,46.
Corvus enca compilator. Nach HELLEBRERERS (briefl. 1975) bläulichgrün mit kleinen
graulichen und graulichschwarzen Flecken. — k = 1,45.
Corvus enca enca. BERNSTEIN (Journ. f. Orn. 7, S. 277, 1859) beschreibt die Eier als
hellgrünlichblau mit olivgrauen und braunen Flecken und Punkten. So ist auch das eine
der Stücke bei Nehrkorn, während das zweite fast weißen Grund besitzt. Beide erinnern
an Nucifraga (k — 1,52). HooGERWERF (1949, S. 273f.) bildet 2 Gelege ab, wie helle,
schwach punktierte Eier anderer Krähen (Corvus). Nach ihm sind sie meist hellbläulich-
grün mit feineren und schärferen hell bis dunkel olivbraunen Punkten und Sprenkeln,
manchmal auch schwarzen, seltener mit (kleineren) Schmierflecken. Olivgraue Unter-
flecke können kaum bemerkbar oder stärker als die Oberflecke sein. Manchmal sind die
Eier fast ungefleckt. — k = 1,43.
Corvus enca celebensis. Auf fast weißem Grund dichte graue, zum Teil flatschige und
streifige Unterfleckung und dunkelgraue sowie gelblicholivbraune Oberfleckung. —
k = 1,35. (Taf. 14, Fig. 4.)
Corvus enca violaceus. |Die Eier verjüngen sich am spitzen Pol stark, sind ziemlich
grobkörnig und mit zahlreichen Längsrillen versehen. Der Grund ist weiß in Auf- und
Durchsicht. Überall, aber mehr am stumpfen Ende, stehen feine gelbbraune Punkte
verstreut. Die aus flachmuldigem Baumnest zugetragenen Eier füllten STRESEMANN
(Nov. Zool. 31, S. 153, 1914) mit Zweifeln, zumal sie weißgrundig waren (siehe aber oben
celebensis). Wegen der verschiedenen Größe dieser drei Eier und der im Durchschnitt
kleineren Maße — die folgende Rasse ist größer als diese — ist aber der etwas unsicheren
‚Bestimmung STRESEMANNS zuzustimmen. Hrsg.] — k = 1,47.
Corvus enca pusillus. Bekannt ist nur das ausgeschnittene Ei im Britischen Museum.
Es trägt auf blassem, grünlichblauem, fast weißlichem Grund ganz gleichmäßig überall
verteilte, recht zarte, aber dichte Unterflecke lavendelgrauer Farbe, zwischen denen
weniger dicht, jedoch ebenfalls gleichmäßig verteilt, kleine dunkelolivbraune Ober-
fleckchen stehen, wie bei feinpunktierten Corvus monedula. Vermutlich gibt es aber bei
dieser Art auch die anderen Corvus-Typen (siehe auch andere (C. enca-Rassen). —
k = 1,46.
Corvus fuseicapillus fuscicapillus. Im CAT. BrıT. Mvs. (1912, S. 475) aufgeführt, siehe
Corvus orru orru (S. 724).
Corvus tristis. Bei GooDWwIN (1976, S. 117) aufgeführt, siehe Ü. o. orru (S. 724).
Corvus capensis. Ausnahmslos erythristisch. Die Grundfarben sind rosaweiß bis lachs-
rosa, die Flecke meist klein bis mittelgroß, überall gleichmäßig verteilt, oft dichter und
gröber am stumpfen Ende, bräunlichrot, purpurrot oder leuchtend kastanienbraun.
Unterflecke violettgrau. Die Zeichnung ist meist bestimmt; doch kommt auch ver-
waschen marmorierte vor. Oft erscheint sie dem bloßen Auge braun, aber unter der Lupe
auch dann rot, wobei sich die Unterflecke deutlicher und prächtig purpurn zeigen.
Länglichovale, einseitig zugespitzte Gestalt. Etwas grobkörnige Schale, die sich trotzdem
46. Oologie, 39. Lieferung
722 29. Ordnung
glatt anfühlt und glänzt. Manche Stücke haben nur feine Punkte, einzelne auf fast
weißem Grund bloß helle und dunklere lilagraue Flecke, keine roten. Auch gelbrote
Zeichnung kommt vor. Gelegentlich gleichgroße, kleine Fleckchen auf der ganzen Ober-
fläche oder solche mit gröberen Blattern gemischt, dann meist weniger dicht. Innenfarbe
orange. Bei einzelnen Stücken ganz zuletzt noch aufgelagerte, kleine Kalkspritzer, wie
von weißem Lack, als eben so seltene Erscheinung auch bei ©. corax kamtschaticus
beobachtet, sehr oft bei Coturnix und Francolinus. — Zuweilen Wirt von COlamator
glandarius. Die kleinsten Eier der Kapkrähe kommen aus NO-Afrika, entsprechend der
abgelehnten kleinen Rasse kordofanensis Laubmann, die größten aus dem Süden. Die
Maße von James (1970, S. 140) für 48 dortige Eier wurden nicht in unsere Liste über-
nommen, da sie einen (Druck-) Fehler enthalten: 46,2 x 31,6 [?] (41,0—53,5 x 27,6 bis
31,3 mm). — k = 1,45. (Taf. 14, Fig. 5.)
Corvus frugilegus frugilegus. Oft heller und feiner gefleckt als C‘. corone corone (und in
den Abnormitäten dort, S. 723, behandelt), meist aber ganz wie diese gefärbt, Größe
jedoch geringer, wenn auch mit Ü. c. corone sich etwas überschneidend. Wiederholt
wurden erythristische Gelege gefunden, zum Beispiel nach Rey (1905, S. 362f.) vom
Röhrwanger Ried und von Glücksburg (Rey, Taf. 125, Fig. 3), und nach dem Neuen
NAUMANN (Bd. 4, 1905, Taf. 47, Fig. 26). JourDAIN (Ool. Rec. 17, S. 89f., 1937) und
v. BOXBERGER (Beiträge Fortpfl. biol. Vögel 14, S. 152, 1938) berichten über eine von
einem einzigen Weibchen in Irland 1929 bis 1932 gelegte Serie roter Eier, die MALCOMSON
(Brit. Birds 23, S. 219, 1930) sammelte. mit blaß nelkenrötlicher und blaßlila Färbung.
— k= 1,43. e
Corvus frugilegus pastinator. — Wie vorige. — k = 1,44.
Corvus brachyrhynchos hesperis, brachyrhynchos, paulus und pascuus. Es ließen sich
keine Unterschiede der Eier gegenüber europäischen ©. corone und frugilegus finden.
Doch werden bei Bent (1946, S. 233) Fälle von Erythrismus bei dieser Art erwähnt,
Eier teils mit rötlichgelbbraunem Grund, teils mit rahmweißem, die lachsfarben bis
ziegelrot gefleckt sind. Solche wurden in demselben Nest sieben Jahre hintereinander
festgestellt durch RowAx (briefl. an BENT) in Alberta, andere in Connecticut und Penn-
sylvania. — k = 1,43; 1,44; 1,43 bzw. 1,43.
Corvus caurinus. Wie ©. b. brachyrhynchos. — k = 1,43.
Corvus imparatus. Nach Kırr (briefl. 1980) blaß olivgrün, stark braun und grau
gefleckt, ohne Glanz, oval; dieser Gleichheit mit ©. brachyrhynchos steht nur das viel
geringere Maß der (©. imparatus-Eier gegenüber. — k = 1,39.
Corvus sinaloae. Nach Kırr (briefl. 1980) wie C. imparatus, aber etwas glänzend.
Oval und kurzoval (k = 1,38). Noch bei Goopwın (1976, S. 93) nicht als besondere Art
anerkannt.
Corvus palmarum palmarum. Ein 1931 gesammeltes Gelege ist nach WETMORE
& Swarzs (1931, S. 329) blaßgrün mit ziemlich großen, unscharfen, unregelmäßig
geformten hornbraunen und dunkelolivfarbenen Flecken auf der ganzen Oberfläche. —
Kr 227:
Corvus jamaicensis. Nach Goopwın (1976, S. 97) gehören dem Britischen Museum
4 wohl von verschiedenen Weibchen stammende Eier, die blaß grünlichblau, grünlich-
weiß oder gelblichgrün sind. Sie tragen dunkel gelbgraue und olivbraune Flecke,
Flatschen und Sprenkel sowie graulila Unterflecke. SCHÖNWETTER (MS) fand sie mit
Ü. corone cornix übereinstimmend und nur wenig kleiner. — k = 1,48.
Passeriformes: Corvidae 123
Corvus nasicus. Weißlich mit grauen und lilagrauen Unterflecken überall und mit
weniger dunkler olivgrauen und gröberen Oberflecken. — k = 1,48. (Taf. 14, Fig. 6.)
Corvus leucognaphalus. Nach unserer Abbildung nicht von voriger Art verschie-
den. Bono (1936, S. 269:44x 29 mm) fehlt unserer Liste. — k = 1,33. (Taf. 14, Fig. 7.)
Sollte JoHNSToN [The biosystematics of American crows. Seattle (Univ. Washington
Press) 1961, S. 102f.] die beiden letzten Arten und (©. brachyrhynchos (mit caurinus)
richtig als Schwesterngruppe der übrigen amerikanischen Krähen (C. imparatus bis
©. jamaicensis) erkannt haben, so kann die Oologie das weder bestätigen noch ablehnen.
Der stammesgeschichtlichen Verwandtschaft mit den gleich folgenden altweltlichen
Arten ist auch oologisch, wie wir schon bei (©. brachyrhynchos hörten, nicht zu wider-
sprechen.
Corvus corone corone. In der Färbung nicht von Eiern des (©. corax zu unterscheiden,
auf deren Beschreibung (S. 726) verwiesen sei, aber, wenn ebenso groß, durch geringeres
Schalengewicht (Rg) abweichend. Unterschiede gegenüber C. frugilegus siehe S. 722.
Wie stark die in der Regel so konstant grünen, dunkelbraun gezeichneten Corvus-Eier
gelegentlich abändern können, mögen folgende, mir vorliegende Abnormitäten von
Ü. corone und (©. frugilegus erweisen. 1. Glanzlos reinweiß und ungefleckt; 2. glänzend
einfarbig himmelblau (niemals einfarbig bräunlich); 3. hellblau mit wenigen gelblichen
Kritzeln; 4. glanzlos blaß graubraun mit sich kaum abhebenden, verwischten zarten
Spritzern derselben Farbe; 5.leicht glänzend grau mit dunkel graubraunen und blaß-
grauen, haarlinien-artigen Zügen und breiten Längswischern in allen Richtungen;
6. nach Art hellbrauner Elstern- (Pica-) Eier überall gleichmäßig braun gefrickelt, trotz-
dem dunkelgrün durchscheinend; 7. glänzend rahmfarben mit vielen kleinen Punkten
und flatschig verwischten, hellen bis sehr dunklen nußbaumbraunen, größeren Flecken,
rahmfarben durchscheinend; 8. auffallend stark glänzend und tief blaugrün, bedeutend
dunkler als sonst, mit kleinen und mittelgroßen, gleichmäßig gemischten und ebenso
verteilten, fast schwarzen Blattern; 9. rosarahmfarbener Grund mit Glanz und braun-
roten Flecken, hell orange durchscheinend; 10. in London und Leiden einzelne graue
Stücke, zum Teil fast einfarbig violettgrau gewölkt, ohne jede Spur von Grün, an
Callaeas und manche Strepera anklingend.
Auf weitere Anomalien, wie sie auch bei ganz anderen Familien vorkommen (Pigment-
klecks statt Zeichnung, Fleckung nur am spitzen Ende und dgl.), sei hier nicht ein-
gegangen; nur fiel mir auf, daß unter den unzähligen gesehenen Oorvus-Eiern sich
keins mit ausgesprochenem Fleckenkranz fand. Rötliche Eier sind ungemein selten,
wurden aber auch bei 0. splendens, C. frugilegus und C. corax bekannt. Einzelne rosa-
graue liegen im Britischen Museum und im Rijksmuseum Leiden. — k = 1,43.
Corvus corone orientalis. — Wie vorige. — k = 1,43.
Corvus corone cornix. Nicht mit Sicherheit von corone zu unterscheiden. Grünliche
Typen herrschen über mehr bläuliche vor, helle und grobfleckige sind anscheinend
häufiger als bei ©. c. corone. Aber schon Rey (1905, S. 359f.), der sich etwa ebenso aus-
drückt, und noch mehr HARTERT (1903, S. 12), MaraATscH (1976, S. 126) und GOODWIN
(1976, S. 123) zweifeln nicht an der Übereinstimmung der Raben- und Nebelkräheneier.
Nach Mararsc# sind also die Aaskräheneier gewöhnlich hellgrün bis grün, die Fleckung
braun bis hell olivbräunlich mit aschgrauen Unterflecken. Diesem Typ fügt er hell- bis
grünlichblaue Eier zu — letztere Grundfärbung steht bei GooDWwIn an erster Stelle, ihr
folgen grünlichweiße und blaß olivfarbene. Dabei besteht eine große Variation in der
Fleckendichte, -größe und -verteilung. Bei kräftiger Fleckung entstehen am stumpfen
Ende Kappen, sogar das ganze Ei kann olivbraun aussehen (GoOoDwIN). — Auch in der
Durchschnittsgröße sind die Eier von corone und cornix so gut wie gleich; doch ist die
46*
724 29. Ordnung
von nordischen cornix in beiden Achsen etwa 1 mm größer als bei deutschen. — k = 1,42,
(Taf. 14, Fig. 8.)
Corvus corone sardonius. Wie vorige, aber im Durchschnitt kleiner. — k = 1,43.
Corvus corone sharpii. Wie vorige. — k = 1,49.
Corvus corone capellanus. Für eine Südform merkwürdig groß. — k = 1,50. (Taf. 14,
Fig. 9.)
Corvus macrorhynchos japonensis, connectens, osai, mandshuricus, colonorum. Bei den
mir bekannt gewordenen Stücken vieler dieser Rassen zeigte sich die Variation ganz
ähnlich wie bei ©. corone und (©. frugilegus, wenngleich die Flecke vielleicht oft kleiner,
kürzer und heller sind als bei diesen. — k = 1,46; 1,51; 1,33; 1,46 bzw. 1,43.
Corvus macrorhynchos tibetosinensis, intermedius, culminatus, levaillantii und anda-
manensis. Wie vorige; doch behauptete Baker (1922, S. 27) früher, daß bei den in-
dischen Formen die Vögel schwerer zu unterscheiden seien als ihre Eier, weil diese bei
intermedius und culminatus reicher und kräftiger gezeichnet, auch dunkler in den
Farben seien, bei andamanensis mehr braun als bei den meist blassen von levaillantii.
Dem widersprechen seine geradezu umgekehrten Angaben von 1932 (S. 9—11), nach
denen die von O-Bengalen ostwärts verbreitete levaillantii die dunkelsten Eier aller
indischen Formen haben soll. — k = 1,54; 1,44; 1,35; 1,37 bzw. 1,43.
Corvus macrorhynchos macrorhynchos. Die bei ©. corax zu beschreibenden Haupttypen
sind auch für Java von HooGERWERF (1949, S. 272f.) nachgewiesen worden, mit ange-
deuteter Kranzbildung am stumpfen Ende mancher Eier. — k = 1,45.
Corvus macrorhynchos philippinus. Auf blaß seegrünem Grund besonders nach dem
breiteren Ende hin dichte olivbraune und verloschen graue Flecke wie bei ('. corone. —
11546,
Corvus orru orru. Nach HARTERT (Nov. Zool. 3, 1896, und 1921, S. 2023) wie Corvus
corone. [Hierher habe ich die als Manucodia atra 1862 erhaltenen beiden Eier des Bri-
tischen Museums gestellt, die OGILVIE-GRANT (1912, S. 475) zu ©. fuscicapillus, GOODWIN
(1976, S. 117), ohne Begründung zu (©. tristis stellte, obwohl beide Arten nicht, (. 0. orru
aber wohl von Misol bekannt sind. Die Eier sind sehr blaß grünlichrahmfarben und
spärlich, aber am stumpfen Ende mit Kappenbildung, dunkelumberbraun und lavendel-
grau gefleckt und auch gepunktet. Lang zugespitzte Gestalt (k = 1,46). Ihre erheblichere
Größe gegenüber den vorher erwähnten dürfte für die Variationsbreite der Art nicht
ungewöhnlich sein. Hrsg.]
Corvus orru insularis. Nach REICHENOW (1899, S. 93) und MEYER wie Corvus corone,
„wie europäische Kräheneier‘‘. Das mir von letzterem gesandte Exemplar und das im
Hamburger Museum sind aber beide wie zart hellbraun gleichmäßig gefrickelte Elster-
eier (Pica pica) mit blaß lehmfarbenem Grund ohne grünen Ton und scheinen auch so
durch. Wie bei Pica gibt es eben auch bei Corvus grünliche und bräunliche Eier, zuweilen
fast einfarbig hellblaue. — k = 1,41.
Corvus orru cecilae. Als vom gewöhnlichen Typ aller Raben- und Kräheneier (außer
Corvus capensis und monedula) muß man 26 Eier dieser Rasse bezeichnen, die ich sah,
und so lautet auch die Beschreibung bei CAMPBELL, NORTH und NEHRKORN (1910,
S. 358) unter dem Namen coronoides sowie bei CaYLEY (1933, S. 56) unter dem richtigen
Namen cecilae. Auch bei dieser Rasse sind die bei der vorigen erwähnten, fast Sturnus
vulgaris-ähnlichen gefunden worden. Aber eine allgemeine Neigung zu blasserer Färbung
möchte man mit Goopwıs (1976, S. 108) nicht annehmen, da viele dunklere Eier aus
|
|
Passeriformes: Corvidae 725
dem gemeinsamen Bereich wohl fälschlich dem kleineren (€. bennetti oder dem größeren
C. coronoides zugeschrieben wurden (siehe auch RowLey, CSJRO Wildlife Res. 15,
S. 27—71, 1971). — k = 1,46. (Taf. 14, Fig. 10.)
Corvus bennetti. Wie ©. coronoides, aber im Durchschnitt kleiner. Re 1,44. (Taf. 14,
Kie.'11.)
Corvus coronoides coronoides und perplexus (und Corvus mellori?). GOooDWIN (1976,
S. 111) beschreibt die Eier dieser Art treffend: Grünlichweiß oder grünlichblau, ge-
sprenkelt, geflatscht oder gewölkt mit gelblichgrauen, olivbraunen oder schwärzlichen
Farben und darunter mit violettgrauen oder hell olivgelbgrauen, also vom gewöhnlichen
Variationsbereich typischer Corvus-Eier. Nach SERVENTYS Maßen (1967, S. 423)
besteht zwischen perplexus- und coronoides-Eiern kein Unterschied, siehe ©. mellori. —
k = 1,44.
Corvus mellori. Eier dieser erst von RowLEY (Emu 66, S. 191—210, 1967) erkannten
Art sind wohl unter denen von (. coronoides, denen sie nach Rowrey (Proc. Ecol. Soc.
Austr. 2, S. 107—115, 1967) ähneln.
Corvus tasmanicus tasmanicus. SCHÖNWETTER fand die beiden Eier seiner Sammlung
wie die von Ü. coronoides. Die Anerkennung dieser bisherigen Inselrasse als Art beruht
auf der Existenz einer Rasse in Victoria. — k = 1,43.
Corvus torquatus. Ganz wie Ü©. corone. — k = 1,43.
Corvus albus. Wie Ü. corone cornix, vorwiegend helle Typen mit lockerer Zeichnung
oft mit groben, aber meist nicht sehr dunklen Blattern. Goopwın (1976, S. 133) führt
auch purpurbraune und gelblichbraune Fleckung an, vielleicht zum Teil nach den blaß
nelkenrötlichen (also erythristischen) 9 Stücken mit braunen, purpurfarbenen und lila
Flatschen, die MORGAN-DAVIES (Bull. Brit. Orn. Club 87, S. 40, 1967) aus dem Ngoron-
goro-Krater beschrieb. CHapın (1954, S. 130) erwähnt streifige Zeichnung.
Nach WINTERBOTTOM (Östrich 46, S. 245, 1975) etwa so groß wie Ü. capensis, und
tatsächlich ergeben die Maße bei RoBERTS (1957, S. 277), die wegen Gefahr der Doppel-
zählung nicht in unserer Liste stehen, für albus 45,0 x 30,5, für capensis (S. 278) 44,9
x 31,0 mm, wogegen die des dritten südafrikanischen Rabenvogels (Corvidae), ©. albi-
collis, nach unserer Liste mit 51,6 x 33,6 mm im Durchschnitt viel größer sind. Kleiner
sind dagegen die Eier NOÖ-afrikanischer Schildraben.
Hierher würde ich am liebsten die vier Eier zählen, die Behrens von Rolle erhielt, und
zwar unter einem anscheinend nie veröffentlichten, auch hier zu verschweigenden
Namen, von den Comoren. C©. albus hat sich dort angesiedelt. Die Maße 48,9 x 32,3
— 1,72 g (46,3—50,1 x 32,2— 32,5 — 1,62— 1,93 g) stehen nicht in der Liste.
Häufig Wirt von Olamator glandarius (CHapın 1954, S. 130). — k = 1,43.
Corvus tropicus. Blaß grünlichblau oder graulichblau, überall, aber dichter am
stumpfen Ende, mit verschieden großen, nicht sehr groben braunen Flecken gezeichnet
(BERGER 1972, S. 102f., Foto S. 103; nach TomiıcH, Paecifie Sci. 25, S. 465 — 474, 1971).
— k = 1,52.
Corvus eryptoleucus. Auf blaß grünem oder blaß blaugrünem, oft fast weißem Grund,
der aber durch die meist nicht besonders grobe, in verschiedenen Tönen braune Fleckung
und Flatschung zum Teil verdeckt wird wie auch die lila, lilagraue und gelbgraue
streifige Unterfleckung. Diese fällt daher nicht sehr auf (Bent 1946, S. 218), obwohl
sie aus feinen und dicht angebrachten Längsstricheln und Haarlinien besteht. Meist
sind die Eier heller, ja, manchmal fast ungefleckt, im Vergleich mit den meisten Corvus-
Arten. — k = 1,45. (Taf. 14, Fig. 12.)
726 29. Ordnung
Corvus ruficollis ruficollis. Wie C. corax (BAKER 1932, S.5); doch scheinen wie auch
bei ©. corax tingitanus mehr bläuliche Stücke mit nicht sehr dichter Zeichnung vor-
zukommen. — k = 1,43. >
Corvus ruficollis edithae. Ich habe nur ein von Archer in Somalia gesammeltes Fünfer-
gelege dieser sehr kleinen Form gesehen und gemessen. Es ähnelt auch in der Größe €.
corone cornix mit streifigen, blassen, violettgrauen Stricheln neben mehr ausgeprägten,
dunkelolivgrünen und braunen Flecken. Das Nest enthielt zugleich vier recht ähnliche
Eier des Olamator glandarius (siehe auch ARCHER & GopMAN 1961, S. 1382), die an-
scheinend von drei Weibchen stammten. Jetzt im Museum A. Koenig, Bonn. Andere
Eier der Archer-Sammlung sind nach Harrkıson & WALTERS (Bull. Brit. Orn. Club
91, S. 12—14, 1971) denen von (. rhipidurus sehr ähnlich. — k = 1,44.
Corvus corax principalis. Wie sinuatus nach BENT (1976, S. 188). Das Schalengewicht
1,30—1,80 (D,, = 1,617 g) von RoseEnıus (s. MAKATScH 1976, S. 124) wurde nicht
in die Liste übernommen. — k = 1,44.
Corvus corax sinuatus. Wie die Nominatform coraz (s.u.). Wırsox C. Hanna gibt im
Condor (26, S. 156—163, 1924) als Durchschnittsgewicht für 10 Eier nur 21,2g an,
während sich aus BENDIREs Maßen für 54 Stück ein solches von 27,5 g ergibt, wie in
unsere Liste eingestellt. Danach wurden im ersten Fall anscheinend nur kleine Eier
gewogen, oder die-in Californien sind überhaupt kleiner als anderwärts. Deutsche,
dänische und russische Eier von (©. c. corax sind ja auch kleiner als englische und
finnische gegenüber dem aus allen zusammen gewonnenen Durchschnitt in unsrer
Liste. — k = 1,52. (Taf. 14, Fig. 13.)
Corvus corax islandicus und varius. Wie corax. — k = 1,42 bzw. 1,41.
Corvus corax corax. Abgesehen von einigen Bemerkungen, die bei einzelnen Arten
von Corvus zu machen sind, stimmen die Eier dieser umfangreichen Gattung so weit-
gehend überein, daß sich ihre Beschreibung auf die von coraxz corax beschränken kann.
Die Eigestalt schwankt zwischen kurz- und langoval mit mäßiger bis starker Zu-
spitzung, doch herrscht die länglichere vor. — k — 1,44. Meistens trägt ein hellgrüner
Grund überall reichliche, nur mittelgroße Flecke von nicht bestimmt ausgeprägter
Form und von grünlichgrauer bis dunkel olivbräunlicher Farbe. Sie sind am stumpfen
Ende größer, dichter und dunkler; dazu kommen undeutliche, graue Unterflecke.
Neben diesem durchschnittlichen Typ lassen sich zwei extreme herausstellen. Der
eine zeigt auf hellgrünlichblauem Grund scharf umgrenzte, dunkelsepiabraune, fast
schwarze Blattern verschiedener Größe sehr locker verteilt neben deutlichen, blau-
grauen oder violetten Unterflecken. Beim zweiten Extrem fehlen diese so gut wie ganz
[oder (nach MARATscH 1976, S. 123) ganz, sind aber auch sonst (nach Goopwın 1976,
S. 140) spärlicher als bei den meisten Corvus-Arten]. Auf seinem blassen, trüb olivgrün-
lichbraunen Grund liegt ein Gemisch von groben, verwaschenen, olivbraunen und
kleineren braunen Flecken. Sie sind mit zarten und auch breiteren lehmfarbenen Wi-
schern in Längsrichtung gepaart. Das Ei erscheint im ganzen also mehr olivbraun
als grün und läßt vom Grund viel weniger sehen als im vorigen Fall. Hatte sich dort
das an sich sehr dunkle Fleckenpigment in seiner ursprünglichen, kompakten Ver-
fassung abgesetzt, so hat es sich hier im Uterusschleim teilweise gelöst und dadurch
aufgehellt, offenbar auch die Grundfarbe beeinflußt. Unter gleichzeitigem teilweisen
Ausfall des Oocyans wurde diese bräunlich, was sich auch darin erweist, daß die Schale
nun mehr lehmfarben oder gelbgrün als wie gewöhnlich rein grün durchscheint. Zwischen
diesen beiden Extremen gibt es alle erdenklichen Zwischenstufen, wobei selbst reiner
blaue und graue Grundfarbe und feine blasse Längsstrichel als ausschließliche Zeichnung
vorkommen. [Viele Varianten, besonders geringe Fleckung, könnten durch vieles Nach-
legen entstehen. So erwähnt JouRDAIs, daß bis zu 5 Nachgelege vorkommen.]
BE PER
Passeriformes: Corvidae ar
Das leuchtende Grün frischer Eier läßt beim Austrocknen der Schale nach, nimmt
auch dann und wann einen grauen oder olivbräunlichen Hauch an. Ebenso kann mit
der Zeit die ursprünglich saftig grüne Innenfarbe ausbleichen, bleibt jedoch bei mehr
blaugrünem Grund dauernd erhalten. Helle und dunkle Eier können im selben Gelege
vorkommen. Nach HoLyoAk (Bull. Brit. Orn. Club 90, S. 40—42, 1970) ist in etwa
der Hälfte der Gelege des Britischen Museums ein Ei des Geleges und sind bei 33 von
54 ©. corone corone-Gelegen ein oder zwei Eier heller, also farbstoffärmer als die übrigen.
Dies gilt auch bei Gelegen der Jahre 1967 und 1968 von drei 0. frugilegus frugilegus-
Weibchen. Doch bedeutet das nicht, daß auch die Nachgelege (siehe oben) blasser
sind.
Besonders bei den größeren Oorvus-Arten, also ©. corax, läßt sich das grobe Korn
oft schon mit bloßem Auge sehen oder mit dem Fingernagel fühlen, denn die tiefen
Täler sind da ziemlich groß, ebenso die abgeglätteten Erhabenheiten, bei kleineren
Arten entsprechend zarter. Längliche Poren, wie sie SZIELASKO erwähnt, bekam ich nicht
zu sehen, immer nur nadelstichförmige, meist in kleinen Kratersenken. Doch können
gelegentlich zwei Poren dicht aneinander stehen. Der Schalenglanz erscheint nur aus-
nahmsweise einmal erheblich, fehlt aber selten ganz. — Bezogen auf die Vogelgröße,
gehören die Eier der Corvus-Arten zu den relativ kleinsten überhaupt, da sie nur 2
bis 3% des Vogelgewichts ausmachen. Das Mißverhältnis ist also eher noch stärker
als bei unserem Kuckuck (Oueulus canorus) mit 3%, dessen Eier gern als überraschendes
Beispiel für besondere Kleinheit aufgeführt werden. — Bei vielen Rabenarten variiert
die Eigröße sehr stark. Ganz kleine Eier von (©. corax haben aber schwerere Schalen
als gleich große von C.corone und sind daran zu erkennen. Abnorm kleine und abnorm
große Stücke blieben in unseren Listen unberücksichtigt.
Corvus corax hispanus. Wie vorige. — k = 1,44.
Corvus corax kamtschaticus. Wie vorige, siehe Bemerkung auf S. 722. — k = 1,43.
Corvus corax tingitanus. Wie corax, anscheinend mehr bläuliche Stücke mit nicht
sehr dichter Zeichnung. — k = 1,46.
Corvus corax canariensis. Nach BANNERMANS Beschreibung der von Meade-Waldo
gesammelten Fuertaventura-Eier (1963, S. 182f.) ähnlich denen von tingitanus aus
Marokko, mit der üblichen großen Variation in der Färbung, darunter schwarzen
Punkten, fast völliger Bedeckung der Grundfarbe durch die Fleckung, aber auch blaß
srünlichblauer Grundfarbe mit wenigen purpurbraunen Flecken, in solchen Gelegen
ein breiter gelblichbrauner Strich rings um das stumpfe Ende — in einem anderen mit
gelblichbraunen Haar- und Pinselstrichen. Die in unserer Liste fehlenden 45 von
BANNERMAN gemessenen Eier (43—56x 30—34 mm) ergeben mit 49,5 x 32 mm
eine etwa gleiche Größe wie unsere Liste, in der ein Teil dieser Eier schon berück-
sichtigt ist. — k = 1,48.
Corvus corax subcorax. Wie corax. Die Maße von WHISTLER für 60 Pandschab-Eier
(47,5 x 33,1 mm), zitiert aus ALı & Rıprey (1972, S. 265), die sie zu tibetanus stellen,
wurden nicht in die Liste genommen, da sie zu stark von BAKERS Durchschnitt ab-
weichen. — k = 1,49.
Corvus corax tibetanus. Vorwiegend bläuliche, nicht so grüne Typen mit meist klei-
neren, dicht stehenden Flecken. Diese Eier werden so groß wie die der Nordrasse
principalis. — k = 1,47.
Corvus rhipidurus. Der in Höhlen und Felsspalten oder an Steilwänden und an
Gebäuden gewöhnlich in Kolonien brütende Fächerborstenrabe legt die typischen
Corvus-Eier. Streifenzeichnung scheint nur Goopwın (1976, S. 146) zu erwähnen. —
keine
128 29. Ordnung
Corvus albicollis (= Corvultur). Eier ganz wie bei Ü. corax. BELCHER (1930, S. 282)
findet sie ziemlich stark glänzend sowie reichlich dunkelgrün und braun geflatscht,
gestreift und gefleckt, mit einer Kappe am stumpfen Ende. RoBErTS (1957, S. 278)
betont, daß die Zeichnung beim Geierraben gegenüber dem Schildraben, C. albus,
mehr gestreift ist. — k = 1,54, also längliche Form.
Corvus crassirostris. Erst 1976 wurden die ersten Eier des Erzraben beschrieben.
ALAMARGOT (Oiseau 46, S. 73—75, 1976) fand sie in Abessinien ähnlich ©. corax, aber
breiter oval (k = 1,34). Türkisblau mit abgerundeten oder länglichen, manchmal
verzweigten, blaß oder rötlich braunen Flecken, die am stumpfen Ende gröber sind
und dichter stehen.
N
7129
Corvidae
Passeriformes
L(g)p—g/2 :yuog]
UOTUIOF
(89 5 '9P6T LNA Yoru)
3 39°0—-0#°0 = 095-318 X 0°FE—9'93
"Egg SIqg wpeAaon 'n uoseıg-eiguoz | %9‘°T | 08 zır0 | 70 9'755 208 (ASprg) sıpmjuoaf 11o7j275 myaounh) GG
(21 'S ‘967 Lnag)
SuruoAM-MN 'n U0S8IQ-ON SIq VERS ITEX STE G'68
eJd0q[VY-MS 'n eIqwmjog USTYLIT SOISUUTL — LL _ — 0'373 L'OE (pıregg) suapauun 1.497]995 nW0UnK,) 9
L(ge—g)p/o :yuogq] (68 'S ‘9F6T Lnag)
U0S8aIQ-MN 075-3 1EXG VE 8'LZ
"n uogsuryseM-M SIg S BIseIy-MS U0A %6'T 18 170 sro g'23 Fr IE ("wH) 24ajags W4a7j095 DWoUnK) OF
(99 'S ‘96T LINE ypeu OF
(#—g/P JSI9UL :YUagL) ‘T94I9MUOYIS “uUIONIYON “UaLM UnoSsn)
[(AwnSpry) 2709u2107/ :NAONUHaN 10q] 3 890-380 = E°T3—-F'8T X 008-3‘
BPLIO)T-[eYU0Z Std S VSN-OS | %r9 | 6‘
(HAPE BAIOIS U9STIOP A9p ur)
vgoPıON
N ZNMBIOA-TLAYUIZ SIG S OMXOW-ON
(nınoygunXx =)
ronZzau9 A -N s2suopungnnb
BENZIUHA- MN N
uorquunjoy) U0A UPPUuYy-O !sıjps4opounkn
(umpopom 10q P/o & :zoaA]y)
[CPPOA)
spouh MAmoyyunmX :NAMOMUHAN 104]
uspuy-O 19p M uarqunjon
(uegeonA UOA 9SI9W AOIH)
(n.ınoyı
-UDX = sısuoppwigmnb 910119 AOynaz)
(ooy wuwyumd)
-S WOISIOTNR AOgNRe) uwgeana !pfmu
seInpuog “r[ewogendg-O ‘(y9T9ı
29. Ordnung
SET‘
Gero
JR)
0770
FIr0
L9°0
99°0
18°0
170
977
977
177
o
15
a
Lie)
_
a
9°7IE
g'FE
1'65
(wu ]'77 X 6°67 99019) 3 L’L’L TTS IL ZUNVAIY yowu uodom dorf 2 (f
(uIOYıyoN Sunjwuweg “wunosnyr "Mag)
8 81‘0-19°0 = #98 —FERX TE -T'EE
(4089) sn.uafıooa oriom Snury4olst
(683 °S ‘0967 HOLANS)
793 -8'ETX 498 -9'7E
odıryg sAiuabounfd orıow smury4oNsT
(uIOJIOS Fran) “MONSOLL "A
“19IJ9MUOYOIS “UIONLYON “UHPSIIT "SNM)
3 0L°0—09°0 = 8°97— 0'378 X 8°98—6°7€
(Je MY) now oriow snunydonst
(uao]
-I98 Fein) “MONSOLL "A “uIoyıyoN “any
-JUBIT UOPSOIT "SO "Sam "LIaug "LVO)
3 16°0—99°0 = ELE-07EX 9'9E—9'ZE
WOSSOY URA SNIDYDd oriow snunydonst
(29449 MuoyaSI
‘MONSOLL, ‘A ‘UIONIUON “UOPSOIT sn)
3 870-880 = 837-008 X L'TE-3'LZ
((deq) sısuoppungmb n
(stogng]) S2ms4opounfio swouh x04090upR)
(9L6T ZAUVAIYV yoru
L ‘MONSOLL "A “UIONIyoN “urftogg SH)
3 870-880 = 937808 X 0°TE-7°L3
(ABndpıy) sniwomwb spauf zn.090unKy
[199 AMuoyaS “MONSOLT, "A
“unosnw "HAIE *TSST 898 67 "WO
‘F uanoF yYone) NYUOMYHAN “UIog "sn
3 79°0-88°0 = Z°IS—-L'61 X TTE-1'93
(wossoy uva) nhmwu n
-9gf-nfipw AaaKNR) O9IXOW-OS :5270.44U09 %09° 69 OTTO sed 102 G'8z (wossoy uva) sımıuao swouh xn4090umÄd) ST
sy 19)
734
Ye)
>
asseriformes: Corvidae
B
(OPL 'S ‘9467 HOSLYAVW yaru)
3 89°0—99°0 = B'ETX FFE-ITE
BIOS] yona “purjuoypoLın) %09 g‘6 zro IK) S'ez 978 "YZLIOUTOTN WM.07949 Snımpungb snm.um) g
(1808 'S
‘767 Luowuvg UT NIvaunofp yoru)
PIE-LTSX GE 9'87
BITSION] _ 18 - _ oz STE UURWANLT SNUDDISLOD SNAMPUDD SUMADH Ep
(1867 "YPLIq “ONATHAUTT, "P yoru)
(uorsnpepuy p/f :a08noıyy) 3 99°0— 990 = 883-9 EEX 0 TE F'ZE
je dng1og “uorundg 8G 6 031°0 gg0 g'E7 Tee (wyoagg) snymosp/ snıwmpunb snyn.ımH Y
[1099 MuoyaS ‘(OFT 'S ‘916]) HOSLVaAVW
"N SAINASOM '77& 'S ‘1967 NAAAHUTA
“(EI6T MONINLINHOS yoru) 698 “PG6]
[(01-)9-g/p] (marıyy BNn MIILNANACT ‘LEGT ATWNNVELTIN —
"n ON I9gne wdoansg ur) uorungolm 0,1 'S ‘Gz6I ATupaamag ‘O6 Au)
-og'n uorugwny] “uoriwane “zromyas 3010 gr‘0(98‘0 FE‘0) =
sig (pwejuurg aogme) uorABurpurys N (398) 698 9'058 X 098 — "1% (8'907)
uoyuoakg uoA wdoangy-n n Joy "M %g9 a8 0870 ro 087 ETE er) sn. wpungb snawpungd snpn4mp x = BL
(OP1'S ‘9167 HOSLVaVN yoru p ‘0808 '8
‘7767 IMGUVF ur NIvaunop yoru wn)
SER IZEX PET 96
(purgaf UOA Aorfl) Ya 9 "UgIM
(S aogıne) purpyyoyagn puwpaf 06 - _ gez LTE SnowuagıYy SNAawpunyd Snm«mH 67
(OPI 'S ‘9161 HOSLYNVN
yoru 9:88] 'S ‘OL6T Sanvp yowu IT
‘suoryogg Sunpwwrg ‘9067 Nivaunaopf)
ausw) 3.090890 = 994 —-1'18X E'FE-7'87
-Otef puryyoyg-s SIG N UOTUUBILIGKTOAK %g‘9 9'8 er‘o 94°0 675 TE YAOIBTT wunbsop [nd SNAAWPUDb ININALUDE EGL
(erwogen) p/o :yogynag) Er -0E3X LIE -TFE
Brwogjendg 'n sederyp UOA Oposspıptzug z'01 — = I:RZ 67% UOSION. POAMZD DSOUAOf DNDOWI V
(uUIONAYON “uraogg "sn “wnosnpy “yLagg)
(o91Xo- M) 3 6L’0-FL‘0 = 095 1PEX 09E-FFE
(„oyenleuend 'n) oostup SIq Waouog-g %89 ı] 3710 08°0 p‘gg Egg (TA) 2027]09 nsouof DyWomI 9
a4 9) p 3 a V
736 29. Ordnung
Tafel 14
Eier von Angehörigen der Familie Rabenvögel und eines Kuckucks
(Namen nach R. KREUGER, Maße nach und Aufnahmen von J. TERHIVUO aus dem Museum Oologieum
R. Kreuger der Universität Helsinki, briefl. 1981; Maßstab etwa 0,6:1.)
Fig. 1. Corvus dauuricus (S. 719). Fluß Iman (Ussuriland). 33,2 x 23,6 = 0,690 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 32,6 x 23,2 = 0,600 g; 35,5 x 23,8 = 0,775 g; 36,1 x 25,1 = 0,830 g; 36,3 x 24,5
— 0,722 g; 37,2 x 24,8 = 0,826 g.) Collectio R. Kreuger 15475.
Fig. 2. Corvus splendens zugmeyeri (S. 719). Karachi (Pakistan). 44,2 x 28,7 = 1,239 g. (2. Ei dieses
Geleges: 44,4 x 27,8 = 1,159 g; 3. Ei im Nest siehe Fig. 3.) Collectio R. Kreuger 2535.
Fig. 3. Eudynamys s. scolopacea (Bd.]I, S. 572) aus obigem Gelege von Corvus splendens (Fig. 2).
31,4 x 23,9 = 0,725 g. Collectio R. Kreuger 2535.
Fig. 4. Corvus enca_celebensis (S. 721). S-Celebes. 38,1 x 27,9 = 1,062 g. (Weitere Eier dieses Ge-
leges: 39,4 x 30,2 = 1,270 g; 39,8 x 29,4 = 1,317 g; 41,9 x 30,0 = 1,181 g.) Collectio R. Kreuger
14116.
Fig.5. Corvus capensis (S. 721). Natal. 52,0 x 32,3 = 1,683 g. (2. Ei dieses Geleges: 50,7 x 31,7
= 1,602 g.) Collectio R. Kreuger 7015.
Fig. 6. Corvus nasicus (S. 723). Cuba. 41,7 x 28,9 = 1,207 g. (Weitere Eier dieses Geleges: 42,3 x 28,9
—= 1,200 g; 42,5 x 28,5 = 1,225 g; 42,8 x 29,0 = 1,266 g.) Collectio R. Kreuger 11 164.
Fig. 7. Corvus leucognaphalus (S. 723). Haiti. 41,2 x 31,2 = 1,352 g. (Weitere Eier dieses Geleges:
39,6 x 30,7 = 1,394 839,6 x 29,5 = 1,210 g; 41,5 x 30,6 = 1,281 g.) Collectio R. Kreuger 11165.
Fig. 8. Corvus corone cornix (S. 723). Finnland. 45,8 x 30,2 = 1,355 g. (Weitere Eier dieses Geleges:
43,8 x 28,8 — 1,067 g; 44,6 x 30,4 = 1,178 g; 46,1 x 30,5 = 1,252 g.) Collectio R. Kreuger 105.
Fig. 9. Corvus corone capellanus (S. 724). Musaigib (Mesopotamien). 43,7 x 27,6 — 0,932 g. (Weitere
Eier dieses ‚Geleges: 42,2 x 26,6 = 0,928 g; 42,8 x 27,5 = 0,870 g; 43,5 x 29,2 = 1,153 g.) Collectio
R. Kreuger 2542.
Fig. 10. Corvus orru cecilae (S. 724). Insel Dirk Hartog (W-Australien). 46,9 x 30,8 = 1,357 g@.
(Weitere Eier dieses Geleges: 43,8 x 29,3 = 1,148 g; 45,8 x 30,3 = 1,287 g; 47,9 x 31,4 = 1,413 g.)
Collectio R. Kreuger 8369.
Fig. 11. Corvus bennetti (S. 725). Broken Hill (Neusüdwales). 43,6 x 27,5 = 0,976 g. (Weitere Eier
dieses Geleges: 41,6 x 27,9 = 1,028 g; 41,9 x 28,1 = 1,030 g; 42,3 x 29,0 = 1,085 g; 44,0 x 27,3
= 1,040 g.) Collectio R. Kreuger 15111.
Fig. 12. Corvus eryptoleucus (S. 725). Vernon (Texas). 43,2 x 30,3 = 1,429 g. (Weitere Eier dieses
Geleges: 41,5 x 29,6 = 1,395 g; 42,3 x 30,5 = 1,491 g; 43,2 x 29,9 = 1,420 g; 44.0 x 30,3 — 1,405 g
Collectio R. Kreuger 7372.
Fig. 13. Corvus corax sinuatus (S. 726). Staat Washington (USA). 52,9 x 33,0 = 2,162 g. (Weitere
Eier dieses Geleges: 50,6 x 32,3 — 2,000 g; 50,9 x 32,7 — 2,005 g; 51,3 x 32,2 = 1,956 g; 51,4 x 32,8
—= 1,967 g; 52,4 x 32,7 = 2,209 g; 52,9 x 33,2 = 2,086 g.) Collectio R. Kreuger 7969.
L3
22
Fr
u 7
’ In) |
| Li
er
|
k
u° ) N
E A \ \ r
.
% \
‘
'k
\ a) Ü »
s Ye
|
" P>
I
137
Corvidae
Passeriformes
(yoskjuL (8°9 °C "I
‘9—p/d :Moleregsn) (pegenyasy =
pegeyasy UOoA AO :19999Mugyag)
(4x2 L Oy2ıs)
(19499 NUOYU9S Sunjwueg)
3 790-990 = 987-377 X 3°E -F’Z£
(uedındg sig O yosAJeL UoA) uea]-N %rg T'6 SszTro seo 0'Ez e‘eg pıojueig snuna4uhy snampungb snpnımHd L
(umaog 'suW
“MONSOLT, "A "UIONIYON "SAW 'LIAT "LVO)
(wyogaag snıdswa =) 3 890-090 = 689 8°78 X 4° TE 087
UBIONUIT %g‘9g 28 0ETO gc‘o T'ez 0‘08 snum4uhy Z jowAÄıy snımpunb snm4mHd 8
(OFT 'S '916T HOSLYaMVJ ypeu
LE: OIYAUOYS MOYSOLL, "A "UIOHITON)
yosÄjeL 'n uoIseyneySULL]L, SIG SUOIS® 3 979°0—-8F0 = E73 035 X I TE 667
-uropy} [OL 204013 'n ujosuf oyosızay rg 6°8 zgT°0 Lg°0 G'EZ TE ONUSZITUOTEM 2y797uÄıy snımpumb snypnımd Fr
R (uioyayoNn Sunjwueg en)
(gU9H snppydaoounppu :NAONAHEN 199) 3 890-090 = 689-618 % 0°°E 008
eursepeq 'n weap-S ‘ea OdelLH
-N Stq (uorseuopyp) Snaneg doyostork) %r9 0°6 70 70 gt 878 78 '9 snpdvarım sniwmpunb snn4mH 08
(1A9949MUOY9S ‘SUHLYOT E08 'S
‘Iz67] Laaıuvg °saw "wuag 'LVO)
uoLIas]y 'n ONNOLeTy ur SepyYy aouropy 3 77'0—-CF0 = 473 -ETEX EEE -8°67
:oNJoAeA UI SepyV doof "mn dogJoadg %8‘9 8 1310 08°0 0'237 FTE xne91o‘ Jourw snıımpungb sninıumH, L
(a4 AMUoY9S Sunpwweg “uaog 'Sum)
3 69°0—-8F°0 = 433-715 X0'TE 4'123
ONNOLBN-N SIG M UELIOS[y Ur ULIO UOA %0L ER ger‘o T2°0 0'373 63 'YIeH 2Uoyoprym snıwmpungb snnımd 9
(968 'S ‘7967 TAH 9 Yvaod
-IHOLN ypeu /7z SAW 'LIAg "Lv ‘susı
-yog ‘MONSOL]L, "UIOYIYON :7£05 IS "LEHE
-4vH Sne HINdOY 'n NIvaunop yoeu)
(vlr :9/r :s/z :r/7 :oanHı 9 edooayayg) 3790-870 = FE 0'375 % JE —-9°67
95] V SIQ M uUOLIOd]V n ussounL-N A) F'8 9270 Fc‘o 8'772 e‘Te :(dq SPIDI1QA12I smııwpungb SnNAmH GG
(susayag Junjwweg)
3 890-870 = 083 0'377 X 0°TE 065
undAg | %r9 | 08 | ezrio | 1E‘o | s’za | 008 "Pe Mauzsnjb snı.wmpungb snpn4md %
4 9 pP n) q V
47 Oologie, 39. Lieferung
(g—g/o :1oyug)
29. Ordnung
(uIoyayoN 'loyyoa
uoypg "enw ug ‘19 'S ‘7E67 yauvg)
3 990-090 = 1'E7—3'08 X T'EE- "EZ
jedoy sıq wuyoseyy uoa vlepwıg | KEe9 | 0310 ero 122 #87 SIOBT A sammaadsıq snıwmpunb snmAmH 08
(1049 MUOyaS ‘MONSOLL,
"A uodunpwuwug !79°S ‘7E6T wave)
3 290-890 = 1'E°- T'TZX TTE—-0'L7
(wRssY) Od1ogg-BIseyg HE9 07 0310 sro 2'227 9°67 "ac snppınypsod snıumpunyb snmAmy 7]
(uodadgr-uryg UOA AOL) (09 "8 ‘7g61 uauvg)
(wwangf) 983 —-9°18 X 9°EE—-8'97
UIAPUII-IOIO N (S aagne) odrogg-uryy — $L = - £'37 c‘og odınyg 280100 enıumpund snmAamy Fr
(6F 'S ‘ZE67 aanvg)
wvuuy 0'937 8'77 X 9°9E—9'87
-g SIq Op UOA “swurmgg oJloT, 9yoıd = 06 = - z'ez q'z£ sum S700n07 snımpungd snn.«md 08
(#°8 ‘1967
®n VMASIHOVH FN® SE6T VNIHSVMVA)
097 0'875 X 0°TE- 9°67
BSOULIO,T = og . o'ez 208 "PID snunaıny snı.wpungb snmAam 7
(60T 'S ‘OP6T "HISIN XP SNVAUOp
"A ‘10449MUOUOS “MONSOLL "A “UIONIYON
(uoıynT sn® gstow AOTzT) “uuogg "Sn ‘088 ‘9767 AHDaoL VI)
wwmg-ON 'n uwuuna-N Buryıg fumm (4XO, Oypıs) 3 99°0—99°0 = 667-815 X 8 FE—8'LZ
-yosjozg sıq m Dungduray sig nsdueryg | %g9 es z10 zo 6'327 g‘oE HOYULAg SISUAUIS ENıWmPUnd SnMADH GI
(61 'S ‘0761 anno, I)
(z1E.1MYOSpuR- MS 'n) yodoy-N — 06 — -- g'r7 067 "ayoy sısuoduryad snıuwpungb snn4mHn 9
(1JO8UO-N UOA AOIg]) (Toy auoyog) 804,0 = TFEX FE
(Hpun.ıq "uÄs SUMLAT 109) ‘(uioyayoN) 3890 = EPZXLZE
Wjoduon | %g'0 TO] ser‘o 99°0 277 ggg SIOqUuoT ?baqumg snampunb snmumn 7
(OPT 'S ‘9161
HOSLYNVJ Sn® ZT Oloyiom om OPGT SIq
2761] IHSVAvaoyy yowu gJ “IOyomuoyag
uopanyp-g 'n opwyyoy ‘purjtuns “MONSOLL, "A (UIONAyON "SA "LINE LVO)
-s() TEINYOSpUBTy-[eaguoz 'n 19JOdUoN 3 09°0— 98°0 = VET-CTEX LTE GL
-ON $tq wars n gergen-wiogpspog | %9'9 28 sz10 770 6'233 FE UUBWSIOAT YPunıq snıuwpunydb snnAamH pp
ay 9) pP 8 d V
738
739
Corvidae
Passeriformes
(puejuurg p/D :aoönaıyy)
Kg—)p—g/»
:LL'S ‘Pg6T en Monuowog]
(8999045) =)
yoeu 07] ‘SSOIp “Uanvg 9 NYEL yoru
gg ‘SuU9ayog “LO9MUOYIS “UIONAUON
SAW "LIT "LVD :906T Nivaunof
:QLE'S ‘GO6T ATY !8 'S 'E06T LASLUVH)
3 870 z8‘0 = 09° g‘61 X 0'9E—-0°LZ
[osurgjeH ?JoyI-N 'n uoraeupuens-N | 908‘ | CL voro | 680 | 67% | Fo (T) snısnnfu snisnnfur snauoswag TE
(1 'S ‘9767 LNag)
USTLIOHTEN 8'738 8'61 X L’6G —-F’T7
-N SIq uogsurysey\ UOA Yolgesusgsnyy —_ 67 = = 9°0% 012 ÄBMSPIYy En.MASgo SIsSUaPDUmd SNA4WSWWAT TZ
uaruIomey-ON SIQ eIqunon "Naig- MS (usgarıyosog Age Fuyo ‘IE 'S LNAg Iog) "Aapıyy snasıub sısuapnumd sSMa4osWWa] —
I —)e/> :yuog] (817 'S ‘9967 Lnag)
OHIXOM MON "N BUOZIIY SIq eure} 9737 — 008 X 0°EE-9'93
-UOM 'n eıIquunJoN) "Yigg UOA Hdargoduaspaf —_ zL — _ 112 667 Aenspıy sıpppdno sısuappund sna4w0s1WäT 0%
(a8 ‘9r61
INAT yoeu Op :MOoNSOaT, "A “UIONIyoN
puejpungnan 'n ‘urdog 'n Surı], "sup “Saw “uag LVO)
Hgand-OS STq Topeagery snjpdwanıbu 3 17°0— 130 = 8'37—-0'61 X 0'E8— E97
UA] 'n HEgend)-Teayusz sıq Kemspıy snypdomnuabru n
uräryoım-N 'n UoynA -[Jeayuaz :sısuopnum | Lg 19 EeoT’o gE‘0 zz 9°6% ("T) sIsuoppund sısuapnund sna4osı4WT 08
(#—g/2 :quag) (£3 'S ‘9P6T Lnag)
(9Pnı9 = :Kendpıy suoufrunf —) GI —- 108 X TE F'87
eyselV —_ 9°9 — — 807 g‘6z (wo) snafıond sısuappumd sna4osuwaT 0%
(F—g/2 :T967 eurysewex ) (tysefegoyy 'n uos
(DN90WT =) -809I0 “IPIIWOT FUunjwwurg “DUurLLT, 'SO)
(uposuf aryy 3690890 = 8'985 —-6'83X PIE 808
arg) ewigg-ou-nyo7L 'n ewıgso tuwwy | %g£‘9 007 geT‘o 89‘0 &77 088 oyedeuogr 244p27 SnmAmy Tz
L(g—e)#/o -aoyeg]
(59990 :NYOMYHAN 199) (MONSOLL "A !1F'S ‘zes Haıvg)
edon stq elepeunp- M 'n (yosny 3 990-070 = 9FE—-L'6T X 0'8E—-097
‚npury stq yoyy popes) uegsturgsjy-O | %9°9 &L 9270 9H°0 0'77 8'87 STOSTA SnMj090uM] snpnamyg 68
(19999nUuoyaS
‘uıoyayoN °IPL 'S ‘9L6T HOSLYMVMW
sne pun ypeu 9 'n IHSYAYdOM ypeu IG)
vuuryos 3 39°0—97°0 = 8'E3—- 1'TE X 878-977
SL m nyosnäy-N nyogtyog ‘opuog | %9‘9 18 321°0 0°°0 L'eG g‘0€ "Sy 1 snnuodnl snımpunb snpn4md 09
34 19) pP 3 d V
47*
29. Ordnung
740
(1x0,7, oyors)
(OPAMUOTOS
:L3'S ‘'ZE6I yauvg ‘sam "zug "LVO)
3 09°0—08°0 = #°93— 173 X 698 —0°TE
geypspugg sıq wıyyig uoA wleruıg-M | se | 001 | sıro | eso | 682 68 | (RÄT) SOmndıoo mrypufrouyghiio Dss004N 09
(g— 8/2 :G61 'S ‘9L6T UIAMPOON) (93 'S ‘7867 vauvg
(stuvgun sısuauıs —) :ugoyayoN 91 'S ‘CZ6I THONOL VI)
umuuy 3 89°0—08°0 = 198-918 X 0°PE—0°6
-[e144u9Z nm SOrT-N SIG S "uwruung- MS (IIORPPOF)
n Sueyig-Q SIq M vuyg-S 'n -Teayuaz %r9 2 zero tar) 227 208 »yDuhyıoayphıa nyoulryıompghıa DSSW004) 8G
(OP MUQUOS ‘87 'S '7E6] yauvg)
uruun A -N 3 770 = 375-737 X TLE-9°TE
nm Bwang-N "PALL-S "wessy SIq WENIS %6'9 6 SITO ae) r'E7 srE (yrÄIg) sugsonamıf sıgsonamf nsswoun 6
; (1099 nUoYIS ‘Moy
-SOL]L, "A “UIOoYayoN ‘08 'S ‘zE6T AIUVgI)
[(9—£)g—F/2 :67 'S eg] 3 89°0—-gF°0 = 377 0'378 X TLE-0°08
[edon-O Sıq waezey uoA velepung-M %9‘g ei elr‘o zs‘0 [‘€z g'ge PINOH Pyoymana sı.usomamyf DssW0047 001
(8— 1/9 :8'S ‘I967 "en eynstyoeH) (FBF 'S 'ZI6T 'SaW "uag 'ıvJ)
BSOULIOT — 86 — — srz 8zE PINON »an.10m9 nssW0o4N |
(g—g/2 :aoyeg) (sU9AJOT “ULONIYON :7E 'S 'ZE6T Tauvg)
(my =) 3 09°0-0F°0 = 075 —-0°73 X 0'378 0'857
uk | re | g8 8s0r’0 | 90 I’ze | s’o8 (TOR M) PMUu4o nss1004) 7
HKIH-ASFANAL NE 10T)
[IgP1[yPsu® Q wı yaıs op ‘("ppogf) (u1oyayoN 'n su9ayag])
SNAALTIS 899D4) :NAOMYHAN 194] 3 770-980 = 0'375 9°08 X 3'TE —-0°6%
ASInYAJ sIq odargan) uurwsosgg 9 umyyosng
-epeg nn Y8WOL “TOsstusp AO1ayyruu r'S a T0T°0 680 q‘Iz fanıye ımosobo4 snysnpfur sna4osWa] F
(uoy99q
-ne3g aoysurgäy F/o :3aoqussurdg) (ZL6T
(1S[ogOL N ®IRL) ‘OST 'S ‘OT vLSOJoNUIG *HYATANADNVAS)
uprıtgıs-M SIq puodon doneysoy N 15-808 x 765 -9°L7
jpsurgqpe} ?Joy-S “uarawuıpuryg-Jeiguoz == c‘g — == 018 182 umangng snuayma snisnnfun snauostWwadg F
(1867 "PLA “ONAIHYTL "FL yaru
F !EeRL 'S ‘9L6T HOSLYNVW Sne ouadıo
97 'n (6767) NYIaauv) yoeu 9 ‘SOINASOY
4 19) pP 8 a V
741
Corvidae
Passeriformes
L(6—)9— 8/0 "yosyeem]
(1867 "Yorıq ‘OnAIH
Um] "pP yoeu 9 GET 'S ‘QL6T HOSLVH
- VW yorwu gp :10oyyomuoyas FILE 'S
‘CO6T AUM !EZ 'S ‘E067 Lumzuvg en)
3.090 93°0 = 0'875 —-0'81 X 308-077
ängıog “uoruedg-perquoz-s | %r‘9 gg sor'o F80 00% 192 :dey 2009 nunfio worndounkn) ICH
(uIoNayoN :1961
ANAIMAUHHOOH 9 SUHNAHUETTIAH ©0681]
FOL 'S ‘g "Taq’uopf "uIO IAHOSAN)
(DmyN =) 3 890-870 = E'ER 077 XE FETTE
BAT ET 9'8 cTT'o 080 9'735 878 (I) punsspjoyg punssppoyg wssı) LI
(8361 ATDUTAXOT "A ‘Sul, 'sn)
(vmy =) 3 890 E70 = L'EE 837% 678-008
vuryo 5 TOOL) R "PRAITS
-UmDoN) ‘pureyf-o SorT-g ‘weuuy-g | %g'c 18 6070 70 G'sE °T$ vomajodhy wurssmnyg DSsı) €
L(OG6T) 6F6T ‘ETT 'S
‘Jg 'snw sopgey "mag “rmp-Nosarg]
097 0'353 X 078 0°08
09UIOE- MN 'n egeumg _ F8 = = 087 0'TE ‚guy our sısuaunyd DSSY) €
(9—F/o :aoyeg)
my =) (1867 "joraq
WIIIOSSTUOT, ‘ONAIHYAL ’L °:zE 'S ‘zZE6T Aaıvg)
um map nm uopsuag-Q SIq weuuy 3 890-880 = 097 — 008 X EEE 897
-N 'n euryp sogsyorgsompns “elerwıfg | %9'G 18 9770 gro 6'537 08 ("Pppog]) sasuaunya sısuaunyd Dssı) OTZ
("SA "zug "LVO
0761 ‘797 'S ‘LT '[00Z "AON ‘LULUVH)
GIS GER X IGE—-0'EE
urureH — 9°01 — = G'F7 FFE yurag- 30 Wppayopym apnayapym mssW0o4N) 8
(1867 "OTIq
(9—g/ :10qeg) ‘ODAIHNAL "PL :85 9 Ze6T yaıvg)
weuuy-S 'n SOr!T 3 690-180 = 89T 8 TEX TG LE-00E
-S wypspoqweyy ‘puepreyg “undıuep (4xaL Oyoıs) (yaAıg)
stqg Burning yoanp “(wessy) oduog-edeun | %F'9 | 101 | geTo | E90 | 077 | THE sısoubnw myouhrysouyghto DSsWouN 9P
sy 19) pP 3 a V
29. Ordnung
742
vyysauy
sw sig S uorpup m 'n MN "Ppapd
wdon-M 'n uncg wayoqy sıq Bauzey
uoa velepwung- MA 'n [RL SNpuf :mogsıuq
(1867 "JPLIq ‘ONAIH
"auL L mru 7 GES ‘ZE6T vauvg)
8 880-980 = LTE E05 X LTE 897
(yyAlg) Ppıypd un
68 | 89 L01°0 | 280 618 1'87 aoyuäug 1ojsı4q mpungnbva DWo4puac FOL
[9£1 'S ‘9161
HOSLYMYW Sne (F0SgXT'LZ) Iusvava
-oOy yru 98 :8ET'S 0167 SINVp
yowu 8 91 'S °7E6I AMUHOVANIMES
X "ıUVH '9203 °S ‘I26I Luduuvy :u
NIvaunof yoru 07 !'saw "“wıug "wvi]
(6—9/» :ıyswäugoy]) g‘13—- ‘81 X 908-977
(nysnAy) nryasnıy 'n Opuoy = Lg = = E05 0'Lg yore paruodnl nunfo nndounh) &L
(FIR 'S ‘LE6T
3 Un NNVNASAULS UT AELLSMNOHOS)
(1—+/» :qp10g) 3 070-120 = 913-861 X 3°68— 8'973
ULAYOSIOZS- ML TWUSUSL-O 'Nsury 65 g°G EOT'O ggo 0°07 1‘LZ osto sısuonsuny punkd npardounkn) LE
(uoryn,g sn IsIow AI) (21 'S ‘CZ61 THDAOL VI)
ULAUYISIOZS SIq G'73 X 0°08 SIq G'0T X 0'95
wurg) ur AM mn Suemypyoss, SIq yodoy — 0, = = 0'77 0'8z Jr] Boyums vunfd vordounkd) LT
(FI 'S 'FE6T AsIaN
:UI MALLAMNOHOS Ypru [ !VNIHSYNVA)
(Wanyospurgy op snw Jorg]) 0°13— 361 X 06° —-0'97
joyopz KO AOgne) Taımyaspury 09 Ale) +01 0 Iran) 2'0Z PLZ OSIOW Wuunubajs punha nrdounk) 0%
(9E1 'S ‘9L6T HOSLYMVIN)
VOIOY HET s'G 960°0 IEO 907 8'97 BUTUSTIURA SI8U2940y wunko nardounh) L
L(6—8)1—g/2 :moryuowecq] (1867 "IPTIA
(snıpodoupfi,) :NNOMMHAN 199) “ONAIHUAL "PS !GET 'S '9L6T HOSLYNVIN
purjumss] sıq yoru ST !C9°S ‘PI6T en MALLNINAC
anwy dodsyun 'n doaajyyrur !sua9sa]jnd “Sam ‘mag LVO EZ 'S ‘E067 LuaLavH)
(uorınacq g/T :108nory) 3 37°0-98°0 = 113-981 X 808 —-0'97
(eIITyPS 910g0) ySUogaag sıq (18JOAUOM uurwsogg sua9sajjnd "n
-N) wöuryp 'n uoreytegsuwa]-s mund %1'9 LS 6oT'o [ran] 203 0'Lz (sejfug) punk wunkd nandounk) GG
sy 3) p n) q V
743
Corvidae
Passeriformes
(z/> yaıuyonss :wuryswwer )
(8£67 VNIHSVNVA)
®SOULIOT — 8‘q —_ — 003 0'83 HOYUIMS 3Dsou1o/ ansoutof BIMIOAPUAT —
(MONSOATL, "A "UIONAyON "SA "Lug "LVO)
[(wmeyger]) sesuauns =] 3 190-180 = 93 0'058 X L/0E—-0'87
umuoL-[eiyusz pun -ON "wuryg-OS 'n -O %19 0 L1T0 er0 8‘IZ 8'8z UURWSOIIg HAUS PDsounof DIWOAPUAT £
(OF 'S ‘ZE67 gaıvg)
U9UrWU 3 870-080 = 875-361 X 038 -9'77
-epuV ‘Purjieyys, "WLIOSSRUAT, ewang-S — 69 — — FI 1'623 aunH SIWWNISSD MSOULLof DIIOAPUAT 5G
K#—g/2 :aoregq] (19199MuoyaS
soe] su9ayog “UIOMIYON :Tp 'S 'ZE6T Auıvg)
"N 'n ueuunp- MN “ewang-Jeiuoz-N 3 870-080 = 878-361 X GEL 97%
“wessy SIg WION dOSLIOA ‘950 elepeunpg %0‘9 L'9 ITT°O 07°0 re 8'827 yyÄIg, sısuahnpmuny omsoulof DMWOAPUAT 08%
(17 '8 ‘2867 dauvg)
PX TIE SIq g’08 X E97
[eMyaeH) SIq URISTUBUSIVY == 19 — = 0‘Iz 1'827 "yS99LL Sıppyuapı990 amsouiof DMaoApuaT 06
(18F °S ‘ZI61 "Sam 'wug "LVD)
09U1og — 08 — — 9'77 G‘0E adueyg sua9sn.1aurd sınpdı990 nymao4puar |
(18.8 ‘'zE6T yaıvg)
0'335 0°08 X 3°78-E°L3
puewyL-MS 'n wLesswuOL, . 19 = — 603 16% YSANYS9L], Korpınyns npungnbpa prmao4upuaT SI
(98 'S ‘7867 Tauvg)
(ummpuryg UOA OL) EES—E61 X E38 887
SBWOA UeNeIY SIg S ewang- MA arm sL = == G‘Iz c‘og JONLE 2.4070795 mpungnbna mım9oApuaT Li
[(g—g)p/o :aoyeg]
LIBABPOH WOA S UOIPUT-OS .ıfkmusaa (FE 'S ‘ze6I auuvg)
[(weygerg) ofnı =] 8 0H‘0— 880 = 175 —-6'08 X F0E -9'72
urtowo,) deyy AOJISIUM 9 Teauury 2fipudoan aeauuryg N
SIg BaBuBy]-S UOA UOIPUJ-M -ppma.ınd %9°7 89 9070 Fran) 612 LLZ JdofsIyM Ppmaınd mpungnbpa waoAapuarT OL]
(g—-F/ :10geg)
(910yeJ p/T :a93n9ıy) (19449 MUOYOg !9E 'S ‘ZE6T ATUvg)
pegqeaopÄy 'n LIeARpoH) sıq S “uoje3 3 68°0-98°0 = EZ 908 X 78-657
-uag ‘wessyY SIq UNO TOSLIOA UOA 'I480 %09 69 OTTO 8E0 G'Iz 067 (wege) ppungnbna ppungnbna nym90o4puaTT 007
4 9) pP 3 q V
(6—)8—g/P :moryuowogq | (dumayy
-AA Sne gsww aoıg) (eumayyy-M N)
neyysomw stq qırqndonmolım
-0$ 9ATRIOPO HT Oydsıseny] PPpuagjaıyasur
(purjuurf UoA A917])
uoyıqndoyy oyasıy
‚rg ‘purgwerp sig Sg USTArurpuryS-N
[(#—z)E/P :917 'S ‘9L6T uImpoon]|
BWwme-[eIJU9Z-N
(BP 8/9 :8717 'S ‘9L6T UIMPOOH)
(wege supı.ıma —)
KLSEN
“BARP BayBuung “uorpurioyurmg 'n vurıngg-S
29. Ordnung
(arongg [oraota) 3 8EOT "LT SOT— TOT :CE'S MAILNANACL yoru Iyomorypsuug (1
[gg 'S ‘Pg67 en MALLNAM
-dg YPvu T9ıp oJ[e “ONIHOSLMODYVL "N
(8167 ‘907 °S ‘ZI "100 yPIoy 'SEny WIoLg
vungf "Yen "and loysury Azyıg) mon
-INLINHOS 78 'S 'L68T MOMOSS !OLST
6 'S 87 "WO "7 uanop “Israston)]
— 6208 = ” gr | T'ee 01303 X 068 0°7E 001
(BEI 'S 'OL6T HOSLVMVW yowu 7
%6‘8 | or | sario | E00 | rs | re | '8761 18-08 '8 ‘9 "uuoyg "ug ‘sUoaanıT) 89%
Sıoquuor umsouuof word DoUF
(gP 'S ‘7661 uaavg)
E81 X T'IG SIQ Z/LI X 8'77
— FE — — 011 g'z7 UOPAOP DDymanda punasdh4) 6
(291 'S ‘2961 aaa
-MIHB0O0OH 9 SUHNHUAATICH “UOPSOACT
"SDW "UIONIyON "SAW "LIU LVO) :C68]
EgT 'S 'E "Wq’UoW "UIO ISTHOSAN)
3 830-870 = 808-711 X 9°L3-0'%
%09 | 8# 860°0 | 10 | «'81 g°07 (uıpnegg) pıwoz punasdh4) LI
(uIOYayoN :cr IN z£61 Uayve])
3.880 = 1'008 161 X 0086‘
USUrWRrPUV H8‘T PC FOTO seo 661 P'9z ygÄlgg vhopıng pıwoapurr] G
(1861 "PLIq 'ONAIHATL "F yoru g “1oyyom
-UOYOS ‘SUOATOET “MONSOLL "A “UIOYAYON
) (wessy z/j :ao8noıy]) "saw "LA "LVO :zF'S ‘zesI Aauvg)
umyuopß-N 'n wunıng 3 19°0— 18°0 = FE3—-9'81 X 8'695 —9°77
-N ‘wessy sıq edon-O uoA vlepewrg %,0°9 LS SOT'O ge 00% 1‘ıZ PIPIJSIOH sıpwyuo«/ nypao«puac OT]
(19499 MUoOYaS ‘suoa
-yog] uloyayoNn !8E'S ‘ZE67] Nanvg)
(#—£/2 :aoyeg) 3 17°0—98°0 = L'33—- 3'086 X 0°TE-1'97
uolpuF-S %0'9 Pakt) 8oT'o Kal) 9'0% &'8z pPINoH ».4s»Bboona] nypWwo4apua PS
3a 3) p 3 a V
744
745
Corvidae
Passeriformes
Nn=)e=9j2
#18 '8 ‘zL67 Aordıy © IV] loan
(499] OS uaıeyyteg -uoyg “uaoyayoNn 798 poor vn
-SUBIL UOA Ip "PH muardoona] =) MEILLNARECL (9061 'SGT 'S ‘GT "TOO 'ayas
[EL-BURYySaoT JAOLjost ‘doqLL, -NOZ) Buaamver :(T6T X LG :OD1OAMZ)
-M Iyoa 'n „eperg ‘oddogsuosıs.uaryg 82 SI 'zE67 amuvg *'sam "Liu "Lvo]
-eyuoz stq Q MUTO 'n -N "Wu 3.08°0—08°0 = 113 0'33 X T'EF —4'68
n ysanyy aepsomp uoA Q trdonmg-OQ | %1'9 | 907 | szr/o | <9'0 274 g‘ag ‚dep pumupong pand DT 887
(1861 "IPTIq “ONATHAL, 'f
yoru G :PEJ 'S ‘9L6] HOSLYAVW yaru
LT 1OIJ9MUOYIS MONSOLT, "A "UIONIUON
Sam "Lage "LVO °GLE'S 'C0O6T Ay)
(ouryuwgsuon c/o :108n01y) 3 990-990 = 397 —-0'77 X T'8E 00€
UOISIUNT, SIG ONNOLTTA ILS 96 sıTo zehtı) g'ez Ge£E IQTOUJEN Prunpunpu Dad monT F8
2 01°0—89°0 = 098 0'869 X 9'886 8'678
jedngaog pun uorurdg %8'T 0°0T Para ul) 89 6'827 gigE . wuyaLg SOJouBJaw Dad Dar.T 09
(807 'S ‘0667 HOSLYAVM)
UIO]]SZUSIUODSZUNN %6'8 001 za) 6°°0 687 68€ 3 FLO 170 = 9'318 X 0°LE—-0'63 OPT
uoyjeyguo uLıep
puejuoyporig pun uol] (038 'S ‘1967 NTAHHUTA en)
zig St yorayurag ‘uorsjog ‘purumyy | %06°4 0'07 927°0 09°0 8'827 12129 3 110-690 = 198-318 X 807 —9°68 IT
Yprwyosuropsy aRıppb nord woud
(BET 'S
‘9L6T HOSLYNVW Sne HOSLYMvW 'n
SAINASOYJ !10999MUuolpgS !(676T 'SEZ 'S
‘ST uNsÄRg ‘899 "WIO "YIoA) AANHONLM
n INHAHON ‘STTaATOoNHg :Ez'S “LEGT
MANWVHLAIN = 69] 'S 'CZ6T TAIOHTHOS
(07 —)8 8/2 :yosyesqei]
(snisejgg 9 'SAÄoy npppn»o =)
(uoıseyney
-su@ı]) “urdAn “uorswurspg] “U9IZLALL,
‘(M 1Ogne) uoIme[soönp sıq OS 'n (pury
IE ‘ZI6T (MWAOYONAPSIELIS) Isa wyng
“ORIUTWON SIUIOQ INSMOUIMOT :6L 'S
‘9067 NIvaunof!gLE 'S ‘C06T AUY "9LST
‘0318 ‘Pz "uIQ 'Fuanof ‘MOTVvHaS wen]
(wu 291 XP GI X6 FF :ULIOUGR)
-uroyyg done) edomajogyin “uorawurp 3 110-780 = 0'898 —-1'08X TOP -L'LE
-uR4g-S opurproporn) uposup oyosyuug | Ko | 66 | zero | seo | een | see (I) voıd nord wong £GL
au 19) p 3 g V
(‘9 °a 1 ‘8 g/ :yuog)
(LIT 'S ‘HET unagg) 3 (88 9°2) ES Uaoıgy g uoa Iyoımnon) (7
(687 °S ‘9P6T ZuEq uw ‘LI6T ‘sparq Jo porod uoreqnour oyy jo Apngs Y ‘aIosvuag) 3 gC‘6 uaorg O8 UoA Iyoınon (ij
[68 'S
‘ez6T ‘7 (09 Uoymom yynog) odolq
urg WIUIoFLR) Jo sSpugq oyL 'NOoSsavAq]
3 390-090 = HET 8/08 X 0° LE-L'9Z
urn) | Yr'9 | (a1‘8 Lz10 | zeio | Fa | 01€ (uoqnpny) 277P1mu word 007
(10799 M
K(er—s),/ :yuog ur opepsurg] -UOYIS MONSOLL "A "UIONIUON !FIE'S
OOTXOp MON ‘0687 AUIANAg IM GET 'S ‘9P6T LNAg)
-N 'n uerNIopjen-[ea}usz SIQ BIONUe 3 310-390 = #95 —-9IEX S'LE-6'L%
-M a eyse[y UA BNLIOWRPpIoN "804 | %6‘T | (106 Iz1’O £g‘o 6'277 g'z£ (vurges) miuospny pad Dar 10%
[’1I09 a9ppwy9S ! (EG 'S ‘8761 SIT
K(9—g)g—r/2 :aoyeg] ‘MOIANT U0A 'L'Z) #2 'S ‘ze67 vauvg]
wıy>]Ig sıq wessy UoA vle] 3 07°7—-99°0 = L'83-F'I3X TIP —FEE
nn TWIN-O “PALL-O 'n Ss stq wydursL-ON | %00°9 12 Ir1°0 g8‘0 9'98 g’8E 'sso[oq] SIsuaunyog Band Dard 291
5 (TER 'S ‘LEGT
= Bn NNVNASAULS UT YILLEEMNOHOS)
z (moo240s "uÄs SULLLAG 199) 3 81/0580 = IT H'TEX BE E'7E
“ tydugsL-o. nsusy | %6°0 | 8‘or | saro | #900 | ra | 6'e a a
a (607 8 ‘OF6I
YANWYHLUIN 9 SNVANOf !7'S “TS6I
(1—g/2 :ıoyeg)) VMNVOVaN) 9 VNASIHOYH '£G °S 'Z£61
(nyosnAy-N :MOdıngadure) auyvg !FI'S ‘GE6T THONnOoL VT '9L8T
uvump "VsOwaoT !DurygIg-g wwangg ur ‘S6L'S FZ UIO 'F UINOL INSMONVZOVL)
UOFLRIS-URYOS WRUUY-[RI}U9Z (UNNUOL 8 0L'0—09°0 = 0'198 0°88 X PER 208
sIq wuryy) yaınp Sunpuny-anwy aop uoa | %r'g 801 0210 19°0 €? g‘cg pinos) nonuas nad var 981
(ABYISISL, UOA IOIT) (VNIHSYNVA yoeu)
(na91.198 "UÄS SULLAT 199) 877-082 X G’9E-—-9°0€E
19INYOSPURTN = 66 _ - ‘77 T’gE uuvwdogg 2ıysmoyuntl wand word S]
(OP6T ‘18T 'S
d0ugorT ‘uryos ‘97 [do A [org "yAyaog "“ylog "NTIsam)
-URLL, EL wurydaog wn odıgon) sıq 893-093 X 898-5 FE
S ‘ysynqaf sIq OQ uargIg-waquaz n -M = GI = = 1‘9z z'7g uuvwdogg n4adoonapauay word ward &
> 34 3) P 3 a v
747
Passeriformes: Corvidae
(9 —)p 8/0 : org]
(8390907 :NAOMUHAN 199)
feaymeg n
(1IN00H0U14) 9 gg =
‘G— pP‘ U9SOM9S UOSLIT (7
A
Ed
N
(A9YY9MUOYAS “TOLIUOF,
"UIONIYON °£CZ 'S ‘ZL6] ArTuay 9 IV
07 'S ‘E067 LULLUYH °G9 'S ‘8761 SIQI
‘“MOTaaT !FrE 'S ‘9061 SIAT “aussaug)
3 8T0-91°0 = EILI-GIIXI PT 8/17
wrmatSs-N SIq JOgLL yoanp nsury-s uoa | gT | €E 81.00 | LT'O 291 g'3% (Jump) sappuuny sıyumay saoopodopmasg &G
(08 ’S ‘£06T LULLUvH
‘9 nF OLE "X 'FAL ‘8061 SIqT “aassıug)
0°03—-9‘8T X 0'138 —-9'9%
ueı]-ON = Tg es — 361 1'9% Kupnaeg 209s07d so90poT &
(S96T ‘LER 'S ‘L eliSojonuıg
‘MONVHOVT 66 '8 “P76I en MILE
-NANACT :UI MOMNVISAy :d0y40MUuoyaS
‘uroyıyan “ualy “utog "Sn 68 °'8
‘e06] LAALYVH ‘Saw 'LIAg "LVO :’JE68 'S
[(g167 ANadauvS yoeu 9 ewmomz) ‘1,687 UOPUOT '908 [007 9014 'NOLMAN)
g—F/9 :76 'S “FE6T Moryuouroq] 3 68°0—08°0 = E18 T'8TX TTE-T 7%
uordsegsurap-g sıq olyosyolumeg | %ıa | 9'C LorO | SE0 1'03 Tele J9YOSLy „iapund s090P0oT PL
(FrF 'S ‘EE6T SIAT "avanNIy
(ue4oyyf UoA AI) 9 MOIANT yoeu T “wnosny SOYoSTHLIET)
(un uaayy 'n 3 890-Fri0 = GE3-9°77X0 FE -F IE
urydsurL], UoA HSagesioy) Sueguis-M | Kos | 68 F0r'0 | 970 087 87€ gung »ydinppiq sa90poI 9
(1ON U8ssIog (78 'S ‘ZL6T INOOHOAII)
stg M Toredunyosgq, “weprez 'nsueyp-N 3 880 08°0 = 6618/61 X 987 -F’LZ
“ueyose]y ‘sopIQ “1g0H) uarsy-peaguez | %0'9 | (17°C g0T0 | E80 9°61 613 Sum 2uos4opuar S990PoT &
(0867 "PPr1q
“[00Z ‘oA "punog 'oM UT Harz)
(9 sıq/o :uosuog) 3 180-980 = E13 86T X 0°65—-6'97
uorumsogqy-S | %I9 | 6‘ 6010 | 980 30% 81a TUOJJO ?WUmsa.4S STULOLIMDADZ 9
sg 9 pP 8 a Yv
29. Ordnung
748
(wıyzIS ur [eg Tqweyg-N WOA dor)
ALL
-g 'n jedon wwang-N SIq uBMyosI9ZS
-M 'n -N aoqn ısuoyag 'n yodny-M UOA
opuoy ‘opıeyyoH “uspumy-g 'n -peyuoz
URYOSURL],
(B9ION
-[eayuoz;) purjuunss(] T9J08uoW-N “eV
“yYSWwoT, stq S “uaplanyy-N "eIYeyasywuey
sig jean-N 'n vedoang sOysYyPIT}sopAou
Ke-g)# —g/2 :yosyerem]
jeın u9aopygruu
uinz sıq wnyIyjegg wWOA 'n ep uoA ‘pur
-UULT- MS 'n U9TARUIPULYS-S SIQ UOARP
N SB.11g99) “sedoan[-OS d11gar) sıq uodıy
L(9—-@)e/P :yuogl]
O9IXOW MON-M N U9TUIOFIRO
-I9P9IN SIG PIqunJo/) "Mag UOA odıgen)
(1— 8/2 :qor0g)
(sıppuny "uÄs SYALAT 199)
(eydurs]-ON) J0unyny sıq Sururg
0/
/O
3
00'9
4
977
L’OT
021°0
9310
L3T'O
0710
c80‘0
P
e9°0
5
7
677
r’ez
876
876
0'E€
L'EE
P'zE
777
sdurg
9 IOARUL Ppomu sopnymohma nbnufionN
(IONIYON :670 'S
‘I86] LUaLuvg Sne NIvauaof yoru)
3 09°0—09°0 = 9'437 — 1'947 X G'9E—F'EE
'Yıryy Pauodnl soponymaoh.ıma nbnafıonN
(199991
-uoyaS “uyny “unoyayoNn Uasunjwuvg)
3 09°0—89°0 = 893 0'358 X GER 9°TE
ION ?ppryosyjo4 soypmymoh.ım nbnafıon
[susayogg !(NIvaunof yaru)
SI 'S ‘ZE6T AEHOVaNIdıLS 9 LUSCLUVH]
3 39°0 = 308-095 X 6FE—0'7€
wyoag
soyaufiy.ıosomu 8079nm90R.ım9 nBnufıon N
(T86T "prıq
‘OAAIHYTL 'L yru F !a9yyomuoyag
‘SU9AUOg !"FLET 'S ‘9L6T HOSLYMVW yoru
F 98SOIP “HOSLYNVJ DUTENYAS 'SAINAS
-Oy "TAZNAM ’EZ 'S ‘LE6T YIHNVHLAIN
:03 'S ‘6561 PNTTLAOH :9061 NIvaunop
"06T Aay :9%'S ‘8067 LutLavH)
3 780-680 =
(g‘L2) 0°98— 918 X 0°88—9°6%
(TI) s379nB90h.m9 s9790B90h.ım9 BDA m N
(PIE 'S'IF6T LNag)
E93 —-9°13 X 098-868
(uosjiy) pumıqun]0o9 nboufıon N
(89 'S ‘LEGT
en NNVNASAULS :UI AELLAMNOHOS)
3 870-970 = SIT —G'STX YES E08
UURUWHSOALIS DIOIWKEDS sıpnıuny So90podopnasT
01
G6G
08
0%
749
(A999 MUuoyag)
[map yAss] > 307 = 068x807 23.960 = TILZX E0F
"n (uwyosurr,L) HloyS[JoyLAUN] UOA dorf] uuvur
AIWUBT DSAIIH IBIy "uryosuvLT, %0'9 G‘o] sFI'0 66°0 1'8z eoP "891 897DAUOD CDA090yAıhd RDA090OYyAAh]
i (a9Joryag Sum
-WURg ETEG'S 'OL6T AVLODHHOLF N TaH
“sL9 °S 96T SQL “NOLSYWNSO 99 'S
‘8761 SIAT "MOTAaaT :99 'S ‘7867 Aaıvg)
L(g—)p—g/o :Aoydıy X» IV] 3 08°T—-00°7 = G'TE-8'98 X 987 — ‘LE
URMYISIOZS- A STA IOALT, (pIno9)
-g wlepwıg ‘ung uoAay-M ‘purer HEg ‘ıl ScT'Oo oT] 087 8‘Ip snunhnypuny EDA090y4ıRd 1090YAUÄT GUT
h [(6-)P 8/0 :monuowog]
® uorgway-N 'n urISTyOSpnjagL “uwgstu (usgoLıyas9g Age Puyo
ee -RUOFV “SNSENNEN SIG [EBUrgeH UeNTes] ‘86 9 'PI6I MILLNANAC 199) (urpws)) sıp90p xn4090y.«uhd amı09oy4uh] —
B (619 8 ‘S967 LNVU9 X auvaag yaru)
Ss oLınB A X pure
2 UOTUTSSOAV 6zIm —- _ 0IE-| 098 > vhoayımg ERA090YAıRd ErA090YAUÄaT —
® (g—F/» :uwunouurg,) (81 'S ‘8967 NVWAUANNVEL)
E UOTSounT, JOynaf QLEXO LE !"GLUEXGLE
& “UOLIOO]V ‘OYNOARA “(usavurg) vwd ®T — 9°pJ — — g°Iz IE LINDA SNADAMA ÜDA090y Arad ERA090yAUAÄaT %
5 (19199 MUgYpS !GPT 'S ‘9L61
u HOSLVAVM “90671 NIvaunof ‘CO6T Aay)
A [9 -E)g -#/? :yosyeen] 3 97°7—-68°0 = 1'698 FTEX PP —4‘9E
[CT) snnonıb snman«4H9 :NUOMUHSN 10q] ("A)
(uoyon]) uoruedg sıq uorızıs 'n uodıy Egg z'91 st‘ 01 0'8z 0°oF snydıumyıoayylhıo am4090y4uhd A090YAURT 8E
(1867 "PLIq
[(u-2)9- 8/9 :urmpanof] ‘ONAIHUTT, yaru g ’IpFL 'S ‘9161
(pur 9/0 :aodnoayy) HOSLYMVI ‘906T NIvaunopf ‘06T Auy)
pugjsugp-s 'n -M SopeM 3 80°1—-99°0 = 365 T'TEX ZEH EEE
‘purjaf ‘uw Jo OST “uopragopg oaouuf As‘ L'ST Ir7'0 16°0 613 Zi6E | CT) mAoVoyuuhd wnı090yuuhd wnı0o0yAuhr TGT
(FG 'S 'z£67 aaıvg)
SLEXZIE 'E98X0'GE
Arugyoseyr-g sıq edoen-M — T'z1 — — 09% 0'7g sıosıy ppdsmuny soponwaok.ınd nbaıfonN %
Sy 9) p n) q V
+
29. Ordnung
750
(L—+#/ :yosyesyen)
(oyoAugyag
:0EL 'S ‘9161 HOSLYNVJ :UL HOSLYMVW
(8n20]0) =) "n SAINASOg °1%'S ‘6761 PNTLLUOH)
puruurg-S 3 16°0—09°0 = 9°99—-9°18X P6E—F°0E
stq uolAwumpueyg doqn puepyoyg-g uoa | %0°L [ie]: sc7'0 LL'O L'FZ 0'7€ T PIRPFUGU DIN POUR ERNION) LIE
(109m
-uoyag ‘uroyuyoN :F06T ‘LES ‘PT 'I0O
L(8-#)9-c/>] "IyOSy1OZ 'DALENVE ! TI 'S ‘E67 YAHOVa
(puowwrnacf 82.197]09 = :8n20]0/) =) -NITLS 9 LULLUVH 'ZOL 'S ‘096T HOSLVM
SIugoBB MT "VW :I6'S ‘7661 UUMVvg :087'S "LEGT
n uray “urodAy “Bppıy sıq S oOseyregl STLATTOAYL) NR ZI6T TASMOUENOC en)
wnz 3807 stq Q, UolMme[sodnp 'n uoJog 3 90°1— 190 = 385 9°77 X 968 9'6%
-jeayuoz ‘uoggnaadysoQ uedrewoye woA | %T'ı ET LST’O 08°0 0'97 s‘rE JOUOSIT aduniowdos npnpouow SnAa4o) 009
(L 48oN
woum ur ‘#—g/2 :ydtorT-uoyydnog) (0F6I TIuag ‘7&6T HOITT-NOLHDNOF)
(uoyon]) 93 — 408 X 1'TE-G'LZ
HHg-PITAPF 'n uoTussoqy-g sıq [BBouog _ a, — — 91% 30€ (snowuurg) of» snıwuogsopyT LE
(199 MUOY9S !9PJ 'S
(wzOLJOIg wyyhsuof =Y ‘QL6T HOSLYAVW !29'S ‘ZE6I yuvg)
Suryig-O SIQ JOALL, 3 880-610 = L’LS- FIX GEH 7'TE
-s 'n elepwm aoqn 'n urleg-M Ssıq Sıoqusaygy X 'ıdwoy
uordseysurLg, “(N AOgme) urap “uouwgqrT %2%9 097 aa) £e80 1'827 s'sg snpppbıp snnonıb anı09oy4uhrl 67
[1SpPmuoyaS !9PT 'S ‘9L6T HOSLYMVW
:L68 8 ‘P96T HAH D UVAOOHHOLH :(GE 'S
‘L867 AanmvHLUIN = 9961 IT ’S
Le) —H/° :yosyeyem] ‘er 'qoog "UIQ) DNVT X TTALEEIIHOS
(A smudj» :NNONAHAN 19) 9067 NIvanaop :698°8 ‘06T Auı]
(FUgaH) snsuyney 3 96°0—99°0 = 987-087 X 877 -7°PE
“ueaf-N eYoryy sıq usruedg 'n oyyoagm | %6'S IH srr‘0 es‘o 8'902 Gsg (7) snmonıb snmonıb znA1090y.44ÄhT TIT
(REP 'S ‘LEGT ® 'n NNVNASAUIS "UI
UHLLAMNOHOS !77 'S ‘GZ6T AHDAOL VI)
uoeyregsurıT, 8 90°1—66°0 = LEG! LEXEEF 08€
n mwyy-S ‘eyedegqae], sıIq MJOoRUON (voyurmg)
-N !Toanyospurgy stq wuryg-N 'n -eyguoz | %1T9 6'917 0°7°0 £0°7 0'87 L'IP sndhyonaq xn4090y11hd ni090YAUÄT OT
34 9 P 3 a V
751
Corvidae
Passeriformes
(2/9
‘9L6T UMPOOH)
(xv4090ShyT =)
Yoyuyomad :Tzı 'S
(uıoyaıyoN Sunjuwweg "sap "Lug "LVD)
3 160-380 = 3'113 998 X ETF -L‘9E
UJOSUT SIFLUYOS][OSEH 'n uoruopaped non | %%‘9 CHI 9F7°0 06°0 8‘93 168 uUossoT samopmpauow snäı1o) F
(uoge m
SAIZNANOVMN yYpeu 6] 'S ‘ZE67 Aaıvg)
88T 975 X 879 -9°TE
puefeyg-MS 'n ewang — 8°z1 — = 193 F'9€ own Suajosur suapuajds SnA40) 18%
(08 'S ‘7867 aTavg)
Ka)#—g/2 :zoeq] 0TE-F EX ZIP 078
uoj4day = 0'51 — — 9‘cz ‘FE "pen sniwbajo4d suapuajds sna4o) 00T
L(9-E)ge—F/P]
(uosöpoH snoıpndun =)
(LL6T ‘8 'S ‘16 AND "IQ Mag md (TYP MuoyDS “MOoNsoLT,
“ysy 's ‘aegısueg ‘ngılq 'n enessen] ‘A ‘NSOMUHEN °L1'S ‘zE6I aııvg)
“uepng ur zumoadıougog :1odınq 3 00°7—090 = 1'698 —0°83X I FF —F‘08
-aduro) amuyosey 'n MN done uorpug | %6‘C | LET | zero | T8°0 | <‘9g | 0’se "A Suopuajds suapuajds sna10) 95%
(1867 'IJPL1q “ONATH
aa] ec yoeu Z :67'8 ‘7867 Amavg)
uorpuf g'8g 9'873 X 099 TE
-MN ‘uwyoseyy-S ‘uegstueysfvy “uraf-OS — rel = _ 6'782 une uuewgnerg 2uahoawbnz suopuajds sna4on) 08
(OP MUgyaS ‘suoayag :0GF 'S ‘LEGT
(J1ynJ93 sn20707 spe pun pnpauou en NNVYNASAUIS “san "Lug 'LV)
ans yone “[yag snpajbau se 70) :P06T “FLE'S TI 'IO 'Z Pauaanvg)
uemyosgazg 'n nsueyg “purjtinssn) SIq 3 980-310 = 013 —-8'35 X 6°LE—-F'67
O uruumz-oS 'n regyy “(uorıgig) ysueyy | 98°C FIT 3370 81‘0 083 678 SI ER SUR) Fre
(19949 nuoYaSI
087 'S ‘9L67 HOSLYaVMW :8TE'S ‘2961
[(6-:2)9-F/2 :yosyeqen] NHAHHYAA :SE6T HEINHOALNT XP LUTATON
(5N90]09 =) “SITAALALOYUT 67 'S ‘LE6T YEINNVYELEIN
(gprwyosuropsg 2440577% yaıgolyosuro) = 89] 'S ‘CZ6] TIOHTHAS '9067 NIva
OSTEICTENTELZUSTITZISERIGES -INOf :GO6T AUY "LI 'S ‘6067 LuaLuvH)
“ureduj) sıq O ‘(pueggoydg dagne) upos 3 00°1— 890 = 0°68— 013 X 807 8'673
-up uoyosrzragg grur edong-M 'n -Toyyım | %08'9 g‘T7 0°7°0 81‘0 807 0'78 yoyporA snbopouuads nynpauow sna1o) GPg
sy N) p 3 a V
(1867 "1PPLIq “ONAIH
-UaL 'L yoru Z !IOyyPMUOyaS "uloflos
je) *DLIU9f UIOYNayON "MONSOLL "A
‘Zınqweg “uopIoT ‘DTU9oN "SU !8LZ
"S ‘1967 SIuaaog °796T "ICP-FER'S
ae —e/>] ‘6 sıqp ‘avans :087 8 '6P6T NAD
(urönoH -NIA !L6E 'S ‘YT6T STQL "NTUANOS NVA
.ounu = YuuwwgnvT sısuaun[op.4oy —) saw zug "LVO 688 ‘G68T TAHOSA)
vroduy-g sıq N Up uoA 'n purdeyy sıq 3 00° 60°0 = EHE L'9EX 0'897 7'8€
vıewwog 'n wepng ur N ‚ET uoa vytıgy | %L9 &77 zst‘o sp‘I 0TE 6'Pr UTOISUOFUOTT Sısuadnd Sna4o) x + 00F
jpdrypay-xnvogswooagug],p 'n uodrp
“uoy eyurgeg 'yemepg woummanoN (4XA,L OypDıs) JOoUeH) XP 'SSOT Sı7S1.4 SMALO) —
(RD.09049P 7 : "SA "LIU LVO)
80 BOUMMSNON- MN N Ufosuf nay (4XOL Pydıs) var) snypdvonsn/ snypdomasn] snauo) —
5) \ (897 °S 'ZIGT "Sam “ug 'LVvQ)
E (usurddipiyg) oaopuım uranrjeg (urgepegg _ 8'z1 — — 8'0z g'LE OTLPPHOML, snypsnd waua sna4o) |
& (FIGI NNVNASAULS)
33 -IFEX08ETT FE
ä (‚name 'n) wR.ıod — ATT = - 677 198 "dep snoonjora woua SNA40) €
(1867 "PLA ‘ONATHULL "P YDeu)
(soqap9-8 P/T :1Pdneıy) 3 GET —90°T = 08-618 X 617-188
ujosuf Sueyn], 'n -dungng ‘sogqspey = KT = = F°67 g'6€ "S9.1g 5784299799 DIUA SNALO) F
(MONSOLL "A: TEL 'S '0L6F SEIHVP
‘EIT’S ‘LI6T ANIMAYTDOOH Y SYANAayaHı
-TaH !ELE'S '6F6T ANTMUTHOOH :6881
I1Z'8 ‘, wIO 'F "umop ‘NIELSNUAg)
(-£/) HTE-F'IGX ELF T'GE
warf | %89 | 69T | esro | 201 #87 g°0Fr (PIPISIOH) D9Ua wOUa NA) &6
(„1/9 :Z18 'S ‘0961 SAIHLANS) (SL6T "org ‘suayaua
(u9PIYT 'SHIN ‘OHULIOE- A UOA AOL) -ATTag :8F67 WOpıy ‘warıay Ma)
o9ULOFK “ujosut 668-908 X IF —s'Er
-MAUDRN uodrum gu Bıyeunng WÄREN — 6°17 — — 80€ s'#F "wigorg soppprdıuoa au SNALO) 8
sy 3) pP 3 d V
752
753
Corvidae
Passeriformes
(093 'S ‘9P6T LNag)
3 TE— (13°93 Fryora)z‘08 X 81H 8'798
®PLIOLT PUyo YVSN-OS _ 0'81 — u 6'87 pF'Ir IPMOoH snyn»d soyoulyıliyonıg SNAaso,) OF
(A9499MUOY9S ‘MONSOLT, "A ‘Suoayogl
“wıogayoN °zIF 'S ‘68T TUIaNnıg =
287 8 ‘9p67 INA °'sam “wagg "LVY)
[L(6—8)9—F/o :yuog] 3 09°T 860 = 7°TE 0,97 % (zNag
(uognpny snupaıaum —) “wu gTEXSg'SC I] T ewur) 1'197 —G'98
uorueAajAsuusg-g 'n BWOYULLNO wıgodgl
sıqg puejpungnon 'Nn 9IZUsyar- MS UOA %9‘9 zsI 8970 01 0'63 ‘IF soy9uliyıliryonag soyoukyıliyonıg SENAT) O0E
[(6—-7)9—g/ :quog] (798 °S ‘9P6T LNag)
OHIX9M A9N-N "N USTUIOHTEIIOPOIN g’TE-F77X 799 —-8'7E
kemspıg sıuodsay soyouhyılyonıg SNAI Or
(MONSOALT, "A “UION
-IUYoN :6PP 'S ‘LE6T "en NNVNASMUES
sur °n :0L 'S ‘FE6T AsIam -ur AH
-LEMNOBOS FL 'S ‘7861 TEUVg IE 'S
‘Cz67 ZHDN0L VI ‘'sam "uag 'LvO)
3 08° 16°0 = 8/08 9'9E X 8'997 —-C'LE
0°IF "pf9 Joppunspd snbapbn«al sna1oy) 09
(1999 MUoYOS ‘1ONY0]yaS SPOMYOS
-UNBIE “UTLIOg "SUN '8GT 'S ‘9L6T HOSLVM
-VJy Sn® HOSLVNVW N SAINASOg :9TE
°S ‘7967 NHATHUAA :PP'S "7I6T MALL
[6-4 -NOIWILET SB TP6T PAUTENTONVAS :8E6T
uoyjos ayos ‘9—E)g—F/2 :yasyeyen] "en STATAHOUN !297 'S ‘76T TAHHTHAS
(ae vsny9s} ‘ZI67 TISMOUAMNOA 'A !L] 'S °E067 LAL
"[yosuro !xn1090undK.f : NAOMYHAN 199) -AVH = 9067 Nivauaop :9067 "FEL'S
UBYOSURLT, ‘CT [00 "Ayosyoz ‘DUTanvg :C06T AUıY)
"n Tossruop sIg Q “uorargıg-M 'n edoang 3 0#°T—-F1‘0 (TE‘0) = 078 2'77
-N SIq uea] 'n wILy ‘uesjjegg “uorfeg]-N (OFE) x (E8P) FILR—Y'LE (8'Z8 :0°TE ! TOR)
“yorayurag-N uoA !(uoruedg-MN) ugog | %9°9 | 097 | 2970 | 90T | 61a | 868 p snbopbn«4f snbopbn«f sna4wo) 0907
-N Sg BgIoqpy-Jeaguoz 'n erquungog "Mu | — SL] — — sig | 1W
Sueyig-Q 'n uemyosgazg ‘osgdurp sıq S
wurgg urn anwy stq Topoduopy-N nm eV | 909°9 0'L7 097°0 071 787
48 Oologie, 39. Lieferung
29. Ordnung
(guy) uoA aoız])
(s2eua0mwnl :NNVWANAIHL, 194)
(svweyngg)
KOHIR/) purun) ‘SOurg Jo OST An)
(D1000N MT =)
WMRURP
(p/» :yosyangl)
vjoruedsıp
(ayow uoyJos 'G—p/o :yuog])
vBWwoy
-BITO-TRAJU9Z SIG purjuf u uSWo1g un
SBXOL-OS n BO M AOy sıq S "morpou
-10/) ‘purjsf OPoyy UoA ByLIOWRpaIoN-O
[yuuo.ıy
-95 (zJypoyy nz) UOPOLyDSAOYFUunurugg
uodomn sngnımdun us SUMLET 109]
BUWLON) Sıq
Sg (UOTLIOFIWOADHPOIN AOKNR) OOIXOA- MN
(sedinewag,
o/# ‘r/z :'[00Z ‘oa "punog 'soM)
("ww snumornvaue 910419 AOYnAF)
(OOAIXOA-ON) 180904
sm ung ‘sedınewnf *uoorf oA0nN
(g—F/ :yuog)
(ByLIoum
"PION-MN) uogdurgse 814 WNSB[Yy-S
1(9—-8)g—H/0 :yuog]]
(pırwgg smumpıuoyf =)
BPLIOL]
9L1'0
r1°0
6510
LEIO
L9TO
910
pP
8'87
066
0'LE
min
[C 9%
mio
6 806
L'SG
tal
(1867 "JPLIq “ONAIHUAL, "P yoru p !L78]
TIT'S ‘g UIO 'F "UMOP (NNVNANSIHL)
8 13°106°7 = 068-987 X EFF —L TR
NOUTUIWOT, SNOIDU ENA40) €
(gL# 'S 'ZI67 "Sa "nıagg "LVD)
G 186'L8 X 077 -9°0F
urous) sısuaoımıumt snauwo) p
(63€ 'S 'TE6T STIVAS P HUONLEM)
79-07. XG8E LIE
319qwoy.m AM Uunımumd wn. ımuımd snaıuo) P
(1oyJoM
-UOyOg SUOAOg WIONayUoN 81T 'S
"Hr6l INA = 8IP'S ‘G68T UIanag)
8 03°191'0 = 0168-93 X 6 TFXTFE
uospiy snÄnAıfısso Snauo) 9
(0867 "orig aa) FOFL—EIO =
gL3—-1'93x (9°TP) TIHE-—S'EE
START VOJpuns SNAUO/) Tr,
(0861 plug SILD\ y»rUu LE : MOYSOL, R °*A)
3 80°7—09°0 = 9'L3—8'95 X 9 IP —8'EE
81979 enm.ndun snauoN) 6%
(1OyJoM
-UOYOS BUOLUOE "MONSOLL "A "UIONLUON
:TL3'S ‘9P6T LNag *'sSap "wıagg "uvi))
3 08°T06°0 = 8°66 6'945 X EP —L'9E
per snurım»o sSnauo) 0%
(AOPYPMUOTIS ‘suodog] "MON
SOLL, A UIONAUON :797 'S '9P67J LNAg)
3 0P°7—00°7
018 (48'9z Fyypn) 70T X ICH -LLE
\ sono,) snnaosnd soyaulyıhyonıg SnAauo/) Ip
le)
ie)
>
Corvidae
Passeriformes
(9—F/2) ("Pe 5W29s077»d "Tyasuro)
uodAsy
sIg S ep uoA 'n uorseurspy ‘urodAy sıqg Q
(927 'S ‘9L6T
HOSEYNVW :4°S ‘ZE6I ALHOVENIMES
” Iudluavy :931-817'8 “"yaopuog
‘89 "UIQ 'F "UMOL “HINHOSN !6LT 'S ‘LEGT
STAIAILOYUN) = 7I6T DISMOYANOT '’A)
3017-760 =
038. 1'183 X (008) 31H -0'9E
UOI[LZIS "N BNISION :@0u.109 "N aU0409 UOAS | %g‘9 ssT 0.10 821 167 9°IF YPIWUYOSUIOTST SNIUOPAMS 9U0409 SNAAO) ZIE
(1867 "PLıq “ONATHAT, 'F up :9g1
"Ss ‘916T HOSLYMVYW Sne HOSLYMVAL 'n
SAINASOY °1% 8 ‘F96I MALLNANAA Sne
136] ANZLIANVHOISLIOM "N EI6T MONIN
-LINHOS ‘68T MOMOSS !TJ 'S ‘6767 PNIT
(puejuurg p/J :19°n91y]) -LMOH :9067 NIvaunof 'c06T Auy en)
uore97 Yyaru doge neuolT SIq SYIRMPNS 3 09°T—08°0 (790) =
"n -980 ‘-paou 240.109 YIUL NOIgOSYOSIp 088998 (8‘EZ) X 0°T7— ‘LE (0°98)
woA edonmyg 'n puepgoyag-N “purjif %29 e‘6T 0LT‘O 0%1 1L'63 er SNIBUUTT 7VUL0I AU040I SNALOT OTL
(19999 MUOY9S “MONSOLT, "A
“urlog "SH “NUOMUHAN °C 'S ‘OL6T
K(1-F)e/p :Aoıyuowocr] UVdODAHILH 9 HAH °SC6T OMNASIY
dımyaseyg 'n "FE'S FC6T "en MALLNANAT :OF6T
uegstgospnpg-N Stq S umfuon-MN N “FSI-S8T 'S ‘IT TPdoA Torq "pdyLog
ueuung-Og sIgq MS 'n M euryg “urdep "og ‘Nausam °:9°9 ‘7g67 Adıvg)
“umerpeg "eyyeyosyweyp “aApeuy sıq 3-99°I 30T = 9°7E— 0'875 X 0°69 —2°98
O ueif-ON 'n 90spray-Q “wypy “Tosstuop | %8‘9 01% 897‘0 se’T E08 ver "UIS.IOA HM 89702U014079U0409 20409 09T
(21) 9°#/0 :T9 '8 ‘69617 zara] (aganuoypg "977 'S
uadıy dop puripng we 'n puosan) aou ‘YL6T HOSLYNYM 'SE6J "e 'n STAAILLOUH
-OILM TONLAMOSSOY99YdSL-M Top ur OgImT "IELLOTHAS :F9L 'S °CZ6T TIDTTHOS
dp Hoyeu “ursgs[og]-StImsojyg ‘pur ‘9067 NIvaunof :098°'S ‘06T ALM)
-yoyag UT ©1u409 yıun WOgIgosyastm 3 09°T— 860 = 9°EE—-3'98 X 0°T9— ‘98
stqg $ 'n O ‘N (pur aagne) edonmg-M | %8‘9 8’61T OLTO 977 66% 6° "I 940409 340409 8R40) 009
(1867 "PLAA “ONAIHASLT, °F yoru)
(ep F/F :2E100Wg/.103n0ay) (9xa, ayeıs) 3 HET 13T = ZTE-968 X 9° IF —9°68
oo oyrong “eoruedsig | %4‘9 ‘617 087°0 | ei]! g‘o8 gor urpneq snjpydwuboono] sna4og F
sa 9 P 3 d V
48*
‘DT ONNASIK yoru 3.077 = ?a PuodomoF yasııy 9 (x
| (L'S ‘661 AHOnOL VI)
purieyL ‘SOovT-N ‘ur 0°TE—0'83 X 099 —L’6E
-UO], (uBmyasIpzS 'n yodoy uoA S vwuryy -- 1‘61 = - 9°6% zb | Voyqurmg Wn.«40u0709 soyauhy.1oamw sSNAa41o) 0%
(suoa
-yogg DLAUOF “ULoyayoy Usdunjuwug)
3 SH T FIT = 169 —-L'LEX LI 607
BWwryoSHSTL, 'n Juwd urangngg
-[ond) ‘PJONSY UJOSUf “B9Ioy Ssıq pueLinwy %L'9 161 0LLO oz] #67 s'zr snaunyspunu sSoy9ukysıommu snaıuo) 8
(1OyP2UHY9S) 800° = 1'8TX TOP
3.860 = 085% €'0F
80 ujosuf nıyy nıy ogsyoupns | %'9 c‘gL go 2z0°1 1'8z For TARBSO 1980 SOy9Uhy.LoımıUu SNA40) %
. (109 MUgypS) 3 701 = 0'LEXO°TF
in (uposup nryy nrg-g 'n -eayuoz) 8 80°T = E'LEX 6'0F
= BWIPSONLÄIN BABUNO Bungdsg uwwuy | %r'9 9°C] 0910 co‘ T‘ız 0°IF "SOG SUAAUU09 SOYUÄYLOAIDU ENAUO) %
o (suaayog] “MONSOLL "A
ä Buyos ‘LES ‘CG6T ONMNASIHY “sap “zIag 'LVO)
nyeA 0 vwmgoswdougg, “(nysnAy) 3 89°7—08°T = 0°88—9'83 X L'8P ZIP
nIYSSNTY sıq S urdep 'n uogranyy “ureyars | HE9 | (11'2 sLT'0 8E‘T T’TE G'gF :dey sısuauodnl soyaukysosmu SNA4O/) UL
(T867 "[PPLIQ ONATHAL,
°P yowu pP !MONSoL] ‘A ‘SUoayag 'NMOM
-IHAN °) 'S 'ZE6T AIHOVANIALS 9 LAHL
-AVH Sn® NIvaunopf !'sny[ 'LIug 'LVO)
(ea p/T :103naıy) 3 SFT 180 = G°TE-9°98 X 087 907
urap- MS n qeaf-oOS | %0°9 [‘61 97T'O 17 1‘62 Ler AOR[OS sSnunm>dnd 3U0.409 SNA40) FG
(usgdA3y g—g/0 :31usoy (19749MUOY9S “MONSOLL, "A ‘NUOM
SYSSPN 9—P/2 :AoryuswaclT) -YXHAN 'Z£'S ‘F96T "en MALLNSNECT
ST7DJUarLo YIUL ‘CT 'S ‘ze6T AAuvg ‘sap "sIug 'LVO)
ypIıgasyasım stq Q uarıgig-M 'n (MS 3 09°T—90°T = 078-495 X E6P —gLE
n ON SOp [IOL Aagne) uray 'n snseyney | %c'g e'sı 9910 9% 1 L'83 sr soyeo) nıd.umys 9u0409 Sna4o/) OPT
Ne 34 9 | P 3 a V
>
757
Corvidae
Passeriformes
(MONSOLT,
"A FUIONayoN *'Sam Liug "uvd) S(pez 'S
‘8687 SIQ]) AVEHLLIEM 9 uNvun-DO]
3 97°T 960 = 168 —-6°13X 8'ER — 1'88
(uenefeg suyo) uoeurddinyg | %0‘9 FLUT 09T‘ co‘ q'8Z LTR ((deg) snunddıpyd soyouhyıoamu sna4o) 8
(91 'S ‘1967 ANaMUId
-oOYH 9 SUAdNauaaTaaH °71% 8 ‘6561
AUTMUTHOOH °698T "FILZ SL "WO I
(G— 8/9 :JI9MAIOS00H) "UINOL “NIELSNUAF ET 'S 'zE6T Aaıvg)
(„oou1og) 8 0L'T—-96°0 = 088-785 X 009-017
aego A N AOWLT, SIQ ufosuJ epung “euryd AOSU M
-Opuf-S 'n -[eayuoz “[psurgeH OYosTÄBIeN %0‘ L 0'123 gT‘0 681 £e‘0E 0'FF SOyIURY.1019DW SOYy9Uhy1o1anUL sna4o) OLT
[K(9—7)g—g/2 :aoyeg] (MONSOLT, "A
(yuuwu9d UBARIT SISUIUDWUDPUD 470) “SUIIYIT “UIONIYON GL 'S 'ZE6T Auıvg)
UHURWUIEPUV 3 0L°T—-86'0 = 8'9E ‘07x T67 —L'9E
‘puejeyp-N ewang “wessVy “uopeduagt %29 9°I% L9T’O Ge‘T 0'TE zrH UOSSOTT ?IJumWmaa7 Soy9uhry.1osonu SnAa4oN) 057
(07 'S ‘2867 vauvg
(#—g/2 :1oyeg) "GLET ‘985 'S ‘eg "UIQ °F ummorp ‘Auy)
($ woA AoI AOTU) 308-898 X 017 —0'9E
uo]4a) ‘egsodued) WOA S EM9O UEIPUT — G‘cT — — 1'827 0'8g SONAg EnIDunwmd soyauhrıoimw SnA4o) G9
(a9999M1
\ [(9—2) g— 8/2 :aoyeg] -UOYOS “MONSOLL, "A :6°S ‘'ZE6T ATUvg)
(JuIs19A ULIO T AOPUOS]OF UL SUMLAT 109) 5 0F°T-060 =
(N woA aoı dory) (43'7E) 0°TE- 898 X SCH 698
jegs9d5urd, woA S eM99 uoIpuf %L9 T‘ıT OLTO GT‘T 6'872 9°68 „„UOSSOT 2yumpımaay““ soyouhyıoaomu sna41oy) 00T
(10999 MUoY9g *UIONAYoN GC 'S 'Z7S6T
L(g)ge—F/> :aoyeg] YUAHLMOT X SALVg !OL 'S ‘zE6T Aaıvg)
uegs 8 79T 87T = 0/88 -0°18X 78H Für
-DIydSpR L-S ‘uordseysueaf-Sg urif-O (‚sısuaunsogagız 'n)
n urgsturwysfvy Sıq [edoen uoA elepewmg %g‘g 8'272 69T‘O ze‘T 118 sFrr surpy snıpaunopur soyauhyıoiomu sna41o/) 0%)
(SPP 'S ‘LE6T
en NNVNASTULS :UT UMLLEMNOHOS)
(nsueyy uoA 101) SLFI-FIT = 088 -L'LEX LFF—6'07
I991L pIos3PM P Ipruyasuropsg
-OS 'n wmpig wwang-ON SIg wurgg-M 8‘I TI 997°0 97° s‘ı3 sr SISUDU1SOJOgL] SOYAUhyıo1mU SNAAO €
sy » pP 8 q V
weuuy-N 'n uwureg sıq $ ‘dueyıg
(MONSOLT, "A "UIONIUON
saw 'LIag "LVO :6 'S ‘CZ6T THDAOL vJ)
3 09°T—00°1 = S'TE-—6‘98 X 969 — 7‘ 8E
-O 'n nsuey stq M wurgg-peaguoz n -O | %89 | 008 | 1270 | 081 008 0'Er uosso] enpomb40] SNA«0,)
(FOYYPMUOyaS Funpuueg)
3 GET-ETT = S0E-TOEX STH -0°T77
UOTURWUSTL, %r9 e6l es 771 E08 rer SMOYUFLTL Snarumusp] snaumuspy sna4oy)
BLIOPIA-O UOA OJIOT, (IXAL, Pysıs) SMOILFRTA 1107J0W SNA4O,)
(pmon (a99PAMUOYOS ‘susayag]'
SY]D.ASND :NYOMUHAN 'N TIHEANYV/) 194) ‘MONSOLL, "A !TPT 'S ‘0L6T SAnvL !IeH'S
UoreagenRIso A- MS snwajduad ‘1967 ALNTAYAS SAW "LIU "LVi) !9Q 'S
(„SO APUSNON-O ‘I06T TIaaamv,) !LST'S ‘688T HLNON)
OA ‘TL67 “Lornoyg »ordunmaou *[yosuro) 8 00°°— LIT = 3 PE-9'83X 0°E9-—-T'OF
TBIIS-SSBE IOP UJOSUT "BLIOJOTA (YX9L Pypıs) SMOUye snwajduad n
stqg g usımwagsny-QO n -ON ;soprouoao | %9'9 0'377 6LT'O ed! c’08 cp | 'Iog 9 'STA SOProu0.09 SOPIOU0.409 SNA.LO,)
E („— F/2 :Ayupaıag) (1867 "JPTIQ ONATHALL, 'f
3 (sopeapnsnon g/T :1P8n9ıy) ypwu g :67F 'S ‘L96T ALNTAUAS yaru Hp)
8 or dey sıq 3 60°7— 860 = 3'08—9°97 X 09F —
€ puejssusondy-M Ban “uoensny-S mn -M 919 ec] 6r1'0 eo] 712 G'6£ ; YION PpUUag ENA40/)
” (1867 "orıq
= ‘ONAIHUFL 'f yoeu F X !MmoyserL A
[L(2—)g—g/P :AyuaAaag] ‘SUSIJO “UIOYIYoN !T7P 'S ‘LIGT ALNAIA
([psuf Sogaefy Ya P/T :9dnoıy) -AaAS yoeu JE ‘saw "uıug 'ıvg ‘79 'S
(saPAOU0.L09 910.119 ‘I06I TIAdanv) 98T 'S ‘688T HINON))
:NSOMUHAN “IIddANV,) “HINON 199) 3 9E°T—06°0 = 8'378 F'9E X 0°79—€'9E
uoegsny | %9°9 | s’sr | orrio | 871 267 1’ SMOUFEIL 9971999 NO SMAAO,)
(1a9449MUoyaS "Turtueg “"[oLIg Umaum
Jsyed ‘Cypruq ‘NNVYmMAUEnNKIL) Sangq
-weH SO !E6'S ‘668T MONAHOILY]
3 97°7—36°0 = 0°08— 0'138 X 087 0'686
jodıyoay MIIRUISIET %6'5 eat sr1'0o 20T s'85 G'oF yy0auonH FSWUpNsur NO SNALO,)
(uUOSSNIIOT UOA AOIT]) (9687 ‘g '[00Z "AON “LUTLUVH)
UOPLISINOTT sIq Q BOumanoN ‘ujosuf 0°6°--0°83 X 0°°7 -9°07
oyastuendeg-Q "a -N "-M uoyynfom-N — Fl - = G'83 9°Ip ayedwuog N. NO SNA.LO
iS sa 19) ve |» | 4a | V
07
8:
759
Corvidae
Passeriformes
(5g uoA [yom 6 fewuro ‘G—p/o)
TIRWOS
[u H)g/P :noyuawogg :9— g/0 :aoyugg |
(jPAPpung snunigum —=)
BLIOSIN-N BIUONT-N B140NOS
stg Sg ‘uerpuf) purs-y “elıep nwy
O/ 8
/oF 9)
sıg Q UoTswIopaoA 'n waryug “uopaoeadu) | Y%r‘ı
I(8-&)1—g/2 :yuog]]
(sBXOT, g/T :aodnaıyy)
sedinewagf, 'n oyenf
-wUenA ST OPLAIOIOS-ON N WUOZLIY
"OS UOA 00TXOM-N "N VSN-MS ur uogenM | Yr'Z
(4/0) (uposug mwary)
IBMRFH UOA SuR-vuoyg
(„—g/p :urdeyg)
(urpneeg eniwpndnas =)
AUNSTIRPR “u9aowoy) “uoryduns
"sy wigepgvy “wgsurg wqwag ‘od
opusunog uepng 'n feSouog sıqg N ev | erg
au
‘6767
68T 9910 Para ralıyd 0er
g'eg 080 OL LOVE gr
01% L6L’O gg‘ 08 str
9:05 - 167 I’Cr
ITHOSAN
(IXOT, Oypıs)
8'I7 3.10 or 608 Tr
3) p G) «{ V
(SUHVTV MA 9 NOSINMVF
‘7961 Nvmaon) 9 Aınouy
ES ‘z Dog '[0O “UaHorag
‘+09 JI9UDAV ne 1919898 UUBWNON 194)
I TH T-FIT = 98-817 X TB —g'8E
scrpjtcg omıympa soypooıfna sna«o) 9]
[19999 nUoYag "UIoyayoN !CTg St OL6I
UVAODHHDLSE D TAH rs poor mn
MIERENEENITECT 9’ ZE6T AENVET 606 SL I
"8 61'100 'Z "ALINHOS! (06T OPT —GET'S
UIOPUOS KH "UIG 'FUMOL) DINTONT!G'S
‘'zZE6T Cprq NIivaunof yaru) uanova
"NIELS N LUHLUVH : GG S E06 LHERLUVEL |
3 86°1— 39T = F'0E— 083 X 0°79—g'8E
UOSSOT sıjjoaı/n.a sıppoonfm.u SNAAO) OPT
(T867 'Jpraq ‘onAıH
"Um, 'L yaru g : 19449 MUOYAS “MONSOLT,
“A ‘u1oyayoN SAW "WI LVO) I8IG 'S
“9P67 LNAT = COP'S 768] TUTanıg)
3 06°1-08°T = SEE 618 X 88F —T'SE
yano,) SnanaJojdN.n sna4o) 6%
(3,67 uaduag) g‘08- 068 X F9H - L'zH
LIONT snardo4 INALOL) r
| 1999PMuoyag "MON
-SOLT, "A "UIOyayoN :TPL 'S ‘OL6T SUnvp
:0E1 'S 'PI6T NIavad :0967 '8'S 7
997 [TOO "UAHDTALT :G6LE 'S ‘6P6T LNAD
-NIA (TI N [SIE “ILA FOL ‘ZE6T °F PA
‘Sopeyexg u uOSUmpJLggY yoaru) DINTONT
"LLH 'S ‘8867 SIAT "TTAHS 799 'S ‘GE6T
sIqgT "Traus D NIvaunopf !90F 'S ‘OTGT
TELNH,) SAW "Liugg LVO) 658 8 ‘G68T
‘20% 'S ‘LL8T Savazuvgy]
3 99°I 917 = 0/88 —-F'LE X 0°T°—0'6€
don sngpD sna4on 00]
:G8El Ss
29. Ordnung
760
(x».09 "uÄs SYULLAI 104)
(19199 MUOYaS TOLL
-U9H 'suU9ayagL :Gq 'S ‘7E6T NEHOVANIALS
X INHLUVH :ur "polig ‘NIvaunof)
8 GE 09T = T9E-E0EX TFT OFF
uorgopugg '[yosuro [osurgpeH oyosnogy | %0‘L 0'87 908°0 61 1233 r’8F "IM N 'IeH snundsıy ©0409 sma4o) OL
(19479 AMUOYag ‘OsnuTyy ‘suoryogt
“apa SPLIq SLUREom :ETT'S ‘OL6T
HOSLYMVJA :UI HOSEVNVW 'Nn NNVWHATT
‘SAINASOY :L96T ‘zz 'S ‘or vsowg
SUNNAUITTIAH :EIE'S 'LI6T NHACH
[K(2—g)9—+/9 :yosyeye] -UHA °9061 NIvaunof !C06] Ad)
Sos[eregt (HOSLYMVYI 199 3 Fg'z any [yon 3 Fc‘e)
stq Q uorargıg ‘(uodA,) 'n puwjuoyporig) 3.09°3— LET = 9'8E 0'658 X 0°89— 1‘ZP
-O ‘uoLIlog] ‘purjsy ‘109g aogne) vdong | %TL 8'87 018°0 007 s'gE s'sr (‚smundsıy 'n) ""T %».409 ©0409 sSna4o/) FFL
3 08°°—-8L'T = 0°9E-0°FEX0°TI—8‘CH
good | %F9 | FTE | 26/0 | 00° 0'°E g‘6F YOTUUNIET SMAUMA 29409 SNAA0/) 8
(19JPMUOTIS IOQS9O
"61 'S ‘9L67 HOSLVMVM :C8G 'S '6F6T
NNYNYANNIL !F 'S ‘'ZE6T NAHOVENIALS
X” wUvH 6106 8 °IG6] ANLUVH
:utr NIVAUAOL !£62 'S ‘COGT HOSZLNYH)
(snıuma "uÄs SUaLıdq 109) 3 GES — LIT = EILE-3'ZEX LS —-0'97
purssp | %g'9 9°TE 008°0 0% 0'78 s‘’6F YOSZJurH snorpumsı x».409 sna.«o) 16
[(8-#)9—g/o :yuog] (1867 "PLIQ ‘ONAIHNAL yowu L :907 'S
(uogdurgse 2/0 :a0önery) ‘9P67 INA = 007 'S ‘C68T TULanag)
THORIWOIN- MN SIA 3 IE -96°T = S'LE-G'08EX E09 6°0F
S BIqWInJog-"Mig-S UA BYNLWWRPION-M | %0'L c‘1z F02°0 90°% L'ZE 9°6# OST MA SNIBNUS XDA09 SNALOI) 19
(19499 MUoyaS
‘MoNsaI]L 'A uroyayon :FZI'S ‘9161
[(8—9/» HOSLYMVJV SN® HOSLYNVJW N SAINASOY
N ur ‘g-7/° s un) g—F/o :yuog] :TPT'S 'OL6T SANYL !q 'S ‘'ZE6T UaHOva
BERIOHH-ON SIA S "NIELS 9 LNHLUVH :887 'S '9P6T LNag)
uoyorpeddy ur uopjegg oIMos puvjpung 3 61°°—60°7 (087) =
-NON “uBdtgdr] “erquunjos) "Nagp-Jeiyguoz 898-3 08EX E99 —0'TF
stqQ S Bylaowy soyosryyae 'n purpuom | Hg 6°0€ r720 L3Z Frg 16h ÄBndpıy sıppdamuıd x0.09 sna4o) 7]
a4 19) pP 8 a V
761
(B 2/0 :HPT 'S ‘OLGT UIMPOON)
(‚ddny seuf/p anıooouyy =)
Ay
urpng wIuoy] wwwog stq uogdAdy
(MONSOLT, "A UIONLTON !PGST 'S
‘1961 NVNAaOYN) DI UNTHDUV 120% "Q
‘367 Tumravg "SAW "Liugn LVO) ©°7[09
JOUdIy :UOUOSO9 GEHT UUWUMON 194)
8 09°7—80°7 = 4PE-9LEX F09—-8°TF
a9qn (O Arme) uorgwray n uoLıAg-g 817 0LT0 108 0'gH YO snunpıdıyı sna1o/) TE
(238
‘8761 SIq] "moraarg °P 'S ‘7867 Yuavel)
yRpvT sıq elepewıg !Dunyıg 'n nsuwyg 809-178 X 789 —6'9#
sg O"OSUGOH-TRIYy n arung WNIONLAUN _ = — 2'ge 9°Ig UOSOPOH nung] 0.409 Sna4o) Cr
. (9 F/9 :1opegg)
8 (vwnpf 2o9uB.ınD] =) (MONSOAT, "A "uloyayoNn ‘I 'S
iQ ArYSSPURT- MN ‘688T ‘I SULVO 'pD “spaug uvrıpuf 8959
2 8Iq mwap-g 'n -[Joggip aoqn "Tpns aoyrom puv sgson uway 'E'S ‘ze6I vg)
8 OIMOS UBISONAINT, UOA UEUHAF "m win 309'7—08'T = TIE—0TEX 969 6° 1 F
; Ksäypg sig wgoryp 'n Ppurjuoyporih)-O F'08 2610 61 078 g‘0g MOZYIOMIK VDIODANS DI SMA4O/) OOT
= (MOoNsor], "A :9 'S
E *E067 LAULUV °'SAJA rag "LVO :0681
& 6gE'S ‘BE "WIO °F "umop “DINHON)
Ö (smunpBung "uÄs SuanLirg 104) (IXOL OypIS) 3 96° 19T = GFE-F0EX 09-077
& UOAIRUR/) %99 19% ssT0 su FE 1'8F "IM DIE SIsuaımund vn409 SNA1O/) 61
a (19I9MUOYOK MONSOLT,
"A ‘NNONUHON °P] 'S ‘0161 HOSLVM
"VW 6888 796] OH P UVdOoDgHaLH
‘9 'S '7g6] MNHOVaNnIaıs N LMREHVH
Sam "Lias] "uvo !2 8 ‘E06 LUNLUVE)
[(8-8)9-g/d :onH » audoogyogy] 3 96°1 081 = 4'9E-008X 099 P'zr
ONNTOALY SIq uogdAay %99 0'9z 18TO 69°1 G'zE g‘yE gay smunpbun 20.09 Sna.41o,) 0%
("ZORT, SnaLMgıSs =)
19.MUYOSp (639°8 ‘1687 INSMONVZDV,L "NUONUHSEN)
usp-N BV doyosıgon ‘TOJoduomN 3 00°°— 31T = FE 9'7EX 989 T'QP
-N ‘opmwyyof] 'n uopanyp stq uormgg-Q | %L'9 G'6% 008°0 87 eg 1'8F I7sMogAcL Snarmyospuny 0m409 Sna.«1o,) P
34 d P 3 a V
29. Ordnung
(LOHUYNVIY) 09E-0'7EX 08-097
uorulssoqy 'n BOLyLIT = 108 z‘'0e er jpdduyy sau4so4ssna0 snauo) P
(MOoNSOLT,
A ‘wioyayoN :7PI'S 0267 SUNYp
0867 WaHOTag 'L967 SWuaaor 'HT6I
(g—g/2 :8PT 'S ‘9L6T UIMPOOH) am) SAW LIE] SLVI) !@SET AUVAYTT)
(auyg snunmgma — Sunymasıoy) =) 3 01°%—-99°T = 8'9E- 918% 8'909 0°L7
wruoyy 'n vpunsn) uoa g eyuyy-g no | %ro | vos | esrto | zer | ee | He | WBUgUrT S27J002q]0 SNA40) FZ
N IE LEE let a a a ——
ay ) p hi) ı V
| ) ETeRRETBBee
762
Nachträge zuBandIlIl 163
Nachträge zu Band III „Handbuch der Oologie“
Seite 8, 7. Zeile bei Parus nach ‚Einzelheiten.‘ fortfahren: Bei ein- bis zehntägiger, zum
Teil nicht zusammenhängender Unterbrechung der Legefolge von Parus m. major, die
vor allem durch Kälteperioden verursacht wurde, hatten die Eier in 47 Fällen vor der
Legepause ein Durchschnittsvolumen von 1,55 cm?, nach dieser Pause aber ein sol-
ches von 1,61 cm?. (ScHMIDT & HAMANN, Journ. f. Orn. 124, S. 163— 176, 1983).
Für die Erblichkeit der Eimaße von Parus m. major sprechen die Messungen und
Überlegungen von VAN NOORDWIJK u. a. (Genetica 55, S. 221—232, 1981, siehe auch
ÖSJANEN u. a., Ornis Scandinavica 10, S. 22—28, 1979). Dasselbe gilt für fünf’ Chara-
driiden-Arten nach VÄISÄNEN u.a. (Ornis fenn. 49, S. 25—44, 1972), für T’roglodytes
aedon aedon nach KENDEIGH (Auk 92, S. 163—164, 1975), für Ficedula hypoleuca
hypoleuca (ÖSANEN u.a., 1. c.) sowie für Geospiza magnirostris und conirostris nach
GRANT (Auk 99, S. 16—17, 1982).
Seite 12, vor 11. Zeile von unten einfügen: 2 Eier von Anthoscopus caroli roccatii Salva-
dori messen 14,2—14,4x9,1mm (Prrman 1963, S.50), A= 143, B= 9,1mm,
G = 0,63g, k = 1,57. S-Uganda u. Mt. Elson bis NO-Ruanda-Urundi (Eier von S-
Ancole).
Seite 14, 14.—12. Zeile von unten bei Parus lugubris anatoliae ergänzen, daß 19 weitere
Eier, die aus dem südlichen Transkaukasien stammen, 17,1— 19,0 x 13,0— 14,2 mm,
A = 18,0, B= 13,8 mm messen (LoskoT, Trudy Zool. Inst. Leningrad 76, S. 56,
1978), G = 176g, k = 1,30. Diese Maße übersteigen noch die unserer Liste für
11 Eier. Durch Kombination ergibt sich: D;, —= 17,9 x 13,7 mm, G = 1,738.
Erstaunlicherweise wurden für 35 weitere Eier (aus der Gegend von Ankara) viel
kleinere Eier gemeldet: D,, — 16,2 x 11,8 mm (Kız1Rrogry, Journ. f. Orn. 123, S. 418,
1982), G = 1,18 (sic) g, bei übereinstimmendem Körpergewicht der 9, das sich aus
dem S. 419 gegebenen Relativen Gelegegewicht mit 16 g errechnen läßt und für Nord-
vögel nach Loskor (S. 52) D, = 16,1 g beträgt. Daraus ergibt sich für 16,0g Weib-
chengewicht ein Relatives Eigewicht RG von 7,4 bis 11%, nämlich
(n = 11) für W-Anatolien 17,7 x 13,5 mm, G = 1,66 g, RG = 10,4% ;
(n = 19) für Transkaukasien 18,0 x 13,3 mm, G = 1,76l)g, RG = 11,0%;
(n = 30) beide kombiniert 17,9 x 13,7 mm, G = 1,73 g, RG = 10,8%;
(n = 35) für Ankara 16,2 x 11,3 mm, G = 1,18 g, RG = 7,4%;
(n = 16) für Ankara 16,6 x 12,5 (in vorigen enthalten?), RG = 7,2%.
Ist das geographische Variation? Für unsere Reihe der RG-Werte (S. 6) würde ein
RG-Wert von 9%, am besten passen.
Meine Überlegung, die Eier aus Ankara zu vernachlässigen, gab ich auf, als ich aus
einer Notiz von SCHÖNWETTER entnahm, daß er 1935 beim Berliner Händler Krichel-
dorff 3 kleineierige Gelege dieser Rasse gesehen habe. Ich wage daher eine Kombina-
tion aller 65 Eimaße, D;,; = 17,0 x 12,9 mm, woraus sich ein Frischvollgewicht von
1,45 g, k = 1,32 und RG = 9,1%, ergeben. Weitere Angaben (oder Überprüfung) aus
dem Raum Ankara sind wohl nötig, zumal aus den Erst- und Letzteiern von 8 Gelegen
(s.o.n = 16) ein etwas größerer, nicht berücksichtigter Wert für G folgt, aberauch im
Hinblick darauf, daß sich im Osten eine wesentlich kleinere Unterart, hyrcanus, an-
schließt (siehe nächsten Nachtrag).
Vor 11. Zeile von unten einschieben: 30 Eier von Parus lugubris hyrcanus (Sarudny &
Loudon) messen 16,0—18,1x12,2—-13,3, A= 16,9, B= 12,83mm, Frischvoll-
gewicht 1,21— 1,53, i. D. 1,40 g (LoskoT, Trudy Zool. Inst. Leningrad 76, S. 56, 1978,
1) gewogen 1,77 8
764 Nachträge zu Band III
Russ.), G = 1,43 g, k = 1,32. Gebiet südlich des Kaspischen Meeres (entgegen Los-
KOT nicht artlich von Parus lugubris zu trennen, siehe Eck, Zool. Abh. Mus. Tierkd.
Dresden 36, S. 145, 1980) (c/ 5—7 Bezirk Talysch). Das Weibchengewicht dieser
kleinen Rasse beträgt D, = 14,6 g, woraus sich ein annehmbares RG von 9,3% er-
gibt.
Seite 20, nach 18. Zeile einfügen: 343 weitere Eier (45 Gelege) von Parus major major aus
der Gegend von Ankara, Anatolien, messen 18,0 x 13,4 mm, bei mehrjährigen Vögeln
D;sı = 18,3 x13,6 mm, G = 1,72g, bei einjährigen D,s = 17,6 x 13,3mm, G=
1,63 g (KIzIRoGLv, Journ. f. Orn. 123, S. 418, 1982; aus seiner Zusammenfassung S$.
422: Je größer das Gelege, umso kleiner das Eigewicht G).
Seite 22, am Ende einschieben: Ein Ei von Parus holsti Seebohm mißt 17,0 x 12,5 mm
(CHANG & SEVERINGHAUS, Bull. Brit. Orn. Club 99, S. 55, 1979), G = 1,37 g, k = 1,36.
Taiwan.
Seite 23, nach 15. Zeile einfügen: 42 weitere Eier von Parus caeruleus caeruleus messen
15,7 x 12,0 mm (K1zIRoGLv, Journ. f. Orn. 123, S. 419, 1982); Werte 15,7 x 11,5 für
41 Eier, S. 418, nicht berücksichtigt, da merkwürdig geringe Eibreite; bei mehrjähri-
gen Vögeln 16,1x 12,4, D,,, bei einjährigen Vögeln 15,2 x 11,5, D;o; Eigröße unab-
hängig von Legefolge), G = 1,17 g (bei Ankara, Anatolien).
Vor 4. Zeile von unten einfügen: 6 Eier von Parus caeruleus degener Hartert messen
15,0— 16,0 x 11,5— 12,5 mm (BAnnERMAN 1963, S. 194), A = 15,4, B = 12,0 mm,
G=1,14g, k= 1,28. Fuertaventura und Lanzarote (Canaren). (Bannerman: c/5
und 1/1 Fuertaventura)
Seite 24, rechte Spalte nach 14. Zeile bei Parus inornatus inornatus einfügen: Bei BENT
errore murinus (Ridgway). Diesen Zusatz in der folgenden Zeile streichen.
Seite 31, vor 4. Zeile von unten einfügen: 22 Eier von Sitta neumayer rupicola Blanford
messen 20,0—21,0 x 14,5—15,35 mm, A = 20,2, B= 15,1mm (ADAMJAN, Ornitolo-
gija 7, S. 161, 1965, Russ.), G = 2,34g, k = 1,34. Transkaukasien und Armenien.
Seite 45, 1. Zeile bei Melanocharis striativentris striativentris abändern: Statt „2°: 6;
statt „20,3°: 21,3; statt „14,5: 15,0 mm; statt „2,20°°: 2,40 g (4 Eier nach PARKER,
Emu 70, S. 177, 1970: 2c/2 Boneno).
Seite 78, vor 18. Zeile von unten als Absatz aufnehmen: Arachnothera chrysogenys
(harrissoni?). Nach HARRISON (Bull. Brit. Orn. Club 88, S. 138— 139, 1968) mattweiß,
von einem schwarzen Haarlinienring am stumpfen Ende umkränzt und mit einigen
schwarzen Punkten und feinen weißen Knoten gezeichnet. — k = 1,45.
Seite 168, 3. Zeile bei Emberizidae nach „5,6% ‘‘ fortfahren: Das behauptete niedrige
Relative Eigewicht RG für 10 Geospizinae-Formen und die daran geknüpfte Annahme
vom Vorteil relativ kleiner Eier beim Drang nach reicher Nachkommenschaft sowie
das ein Jahr später behauptete höhere RG lassen sich, soweit Maße vorliegen, nicht
bestätigen: Bei @eospiza difficilis diffieilis zum Beispiel beträgt RG 15,5 bzw. 15,3%,
|Gewicht Adulter (= Weibchen?) D,o; = 11,6g; GRANT, Auk 99, S. 19, 1982, bzw.
100, S. 229, 1983], nicht weniger und nicht mehr als bei etwa gleichschweren Ammern
unserer Liste. Wie GRANT (1982, S. 19) auf 17,1%, kommt und bei Certhidea olivacea
mentalis 1982 auf 17,4%, kommt [in Wirklichkeit 21,9%, bei 7 g Körpergewicht (1982,
S. 19), allerdings 17,4%, nach dem Körpergewicht von 8,8 g (1983, S. 229)], ist unver-
ständlich. — Statt 8,9 bzw. 10,7%, errechne ich für RG bei @eospiza magnirostris und
conirostris, diesmal wenig von GRANT abweichend, 9,0 und 11,0%. Für Geospiza
difficilis septentrionalis, 20,2 g schwer (GRANT 1982, S. 17), errechne ich 11,7%. Jeden-
falls passen die RG-Werte gut zu den bei Emberizidae vorliegenden und sind größer
Nachträge zu Band III 765
als die der Fringillidae, wobei allerdings die Schwankungsbreite in beiden Reihen noch
wenig bekannt ist.
Auch die in der zweiten Arbeit (1983, S. 229) aus Vogelgewicht und Eigewicht (dies
nach unserer Liste) sich ergebenden RG-Werte von 14,6% für (amarhynchus parvulus
parvulus und von 15,2%, für Geospiza fuliginosa passen gut in die RG-Reihe für
Emberizidae. Darum werden wohl die weiteren Überlegungen bei GRANT, warum auf
Galapagos kleine Vögel besonders große Eier legen, überflüssig, oder sie wären für alle
Gegenden zu stellen, da es sich um eine allgemeine Erscheinung handelt.
Längere Brut- und Nestlingsdauer bei den kleineren Geospizinen, die nicht so stark
unter Nesträubern leiden wie die größeren — die größte, Geospiza magnirostris, zum
Beispiel unter Asio flammeus — sind eine auf feindarmen Inseln weit verbreitete Er-
scheinung, und die Sumpfohreule dürfte auch nicht als Ursache für die relativ kleinen
Eier des größten Geospininen in Frage kommen. (Siehe auch die Nachträge zu Seite
262 und 263.)
Seite 202, nach 11. Zeile als Absatz einfügen: Rowettia goughensis. Eier in einem Farn-
gabel-Napfnest glatt, länglich, fast elliptisch, hellblau, mit mehr oder weniger dunkel-
braunen Spritzern und Fleckchen auf der ganzen Schale spärlich, am stumpfen Ende
aber viel mehr und zusammenfließend gezeichnet, so daß ein großer Flatsch mit un-
regelmäßigem Umriß und einigen kleinen blauen Flecken entsteht, ähnlich wie bei
anderen Emberizidae, besonders bei amerikanischen Arten (Voiısıs, Ostrich 50, S. 123,
1979). — k = 1,44.
Seite 213, nach 11. Zeile als Absatz einfügen: Camarhynchus pallidus. Wie andere Cama-
rhynchus- und Geospiza-Arten (GRANT, briefl. 1983). — k = 1,38.
Seite 250, 1. Zeile bei Aimophila ruficauda acuminata Zahlen abändern: Statt „20,7°:
22,0; statt „15,7°: 16,0; statt „2,70°: 2,97; hinzufügen g = 0,19 g, d = 0,088 mm,
Be 6,19.
Nach 5. Zeile einschieben: 6 Eier von Aimophila ruficauda lawreneii (Salvin & Godman)
messen und wiegen 22,5 —23,5 x 16,8—17,4 = 0,18—0,22g (Kırr, briefl. 1980),
re 2515 17mm, 5—-041988, d—- 0,085 5mm, 'G=3,54g Re =56%,
k = 1,35. Oaxaca und W-Chiapas (Mexico). (Rowley: 2/2 Oaxaca).
2 Eier von Aimophila ruficauda ruficauda (Bonaparte) messen 22,0— 23,8 x 16,9 —
0,19—0,20 g (Kırr, briefl. 1980), A = 22,9, B = 16,9 mm, g = 0,194 g, d = 0,085
mm,G=3,43 g, Rg = 5,1%, k = 1,36. SO-Guatemala bis NW-Costa Rica). (Williams:
1/2 Costa Rica)
Vor 6. Zeile von unten einfügen: 9 Eier von Aimophila quinquestriata septentrionalis
van Rossem messen 18,8— 20,3 x 15,0— 16,0 mm (MILLs, SILLIMAN u. a., Living Bird
18, S. 105, 1980), A = 19,8, B= 15,5 mm, G = 2,50 g, k = 1,28. S-Arizona und NO-
Mexico (c/3—4).
Seite 253, nach 12. Zeile hinzufügen: 2 Eier von Rowettia goughensis (Clarke) messen
26,7 (repariert) x 19,7 und 28,8x 19,0 mm (C. J. HArrıson, briefl. an Voısıy),
A = 27,8 mm, B = 19,3 mm, G = 5,43 g. Insel Gough (Britisches Museum: 1/2).
Seite 262, nach 19. Zeile einfügen: 155 Eier von Geospiza magnirostris Gould messen
22,2 x 16,6 mm (GRANT, Auk 99, S. 16, 1982), G = 3,15 g, k = 1,33. Tower — Geno-
vesa und wenigstens 12 weitere Inseln (Galapagos) (Eier von Tower).
Beide letzten Zeilen: Bei Geospiza diffieilis diffieilis ergänzen, daß 201 weitere Eier von
Tower 17,8 x 13,6 mm messen (GRANT, Auk 99, S. 17, 1982), G = 1,7198, k = 1,31,
RG = 14,7% (nach Gaa.,=0? = 11,6 g, GRANT, ]. c. S. 16 von Insel Wolf).
Am Ende anhängen: 23 Eier von Geospiza diffieilis septentrionalis Rothschild & Hartert
sind signifikant größer als die der vorigen Rasse. Kein Wunder, da adulte Vögel (also
766 Nachträge zuBand III
wohl auch die 2) auf Wenman im Durchschnitt 20,2 gegen 11,6g bei der Nominat-
form wiegen (CLARK, ]. c., S. 16); ohne Angabe von Maßen steht bei CLArk das Ei-
volumen von i. D. 2, 336 cm?. Aus den brieflich von CLARK (1983) erhaltenen Durch-
schnittsmaßen D;,; = 20,0 x 15,1 mm errechne ich G = 2,36 B- Culpepper und Wen-
man (Galapagos).
Ein Ei von @eospiza scandens subsp. mißt 20,4x 15,3 mm (Grant, briefl. 1933),
G = 2,48 g. (GranT: c/l1 Daphne Major, Galapagos)
Seite 263, 4. und 5. Zeile bei Geospiza conirostris propinqua ergänzen, daß 139 weitere
Eier i. D. 21,3 x 15,3 mm messen (GRANT, Auk 99, S. 16, 1982). Kombiniert mit 10
Eiern unserer Liste von derselben Insel Tower ergibt sich für 149 Eier: 21,4 x 15,8
mm,'G = 2,19g, k = 1,39.
Nach 11. Zeile einfügen: Ein Ei von Camarhynchus pallidus subsp. mißt 20,2 x 14,6 mn
(GRANT, briefl. 1983), G = 2,23 g (Grant: c/1 Galapagos). 34 Eier von Certhidea oli-
vacea mentalis Ridgway messen 16,7 x 13,3 mm (GRANT, Auk 99, S. 16, 1982), G =
1,53 g, k = 1,26. Tower (Galapagos) (Vergl. Nachtrag zu Seite 168).
Seite 306, vor 7. Zeile von unten einschieben: Eier von Phaenicophilus poliocephalus
poliocephalus (Bonaparte) ohne Maße, wenn überhaupt, beschrieben — Boxp meint
an der oben Seite 284 zitierten Stelle, 1936, mit 24,5 x 17,5 mm wohl die folgende
Rasse coryi. Hispaniola (S-Haiti) und zwei nahe gelegene Inselchen (Ile & Vache und
Grande Cayemite). 3
Seite 315, vor 6. Zeile von unten einfügen: 3 Eier von Euphonia chalybea (Mikan) messen
18,1— 19,5 x 13,8— 14,7 = 0,10—0,12 mm (siehe Text Seite 295), A = 18,7, B= 14,2
mm, g = 0,110 g, d = 0,073 mm, G = 1,97 g, Rg = 5,6%. SO-Brasilien, NO-Argen-
tinien, O-Paraguay (= Hypochaea).
Seite 319, vor 12. Zeile von unten einschieben: 3 Eier von Dacnis cayana paraguayensis
Chubb messen 16,5— 18,0 x 12,0— 13,5 — 0,07—0,08g (nach von IHERING 1900,
S. 208, und Nehrkorn-Sammlung), A = 17,0, B = 13,0 mm, g = 0,075 g, d = 0,058
mm, G = 1,53 g, Rg = 4,9%. Maranhäo bis Rio Grande do Sul (O- und S-Brasilien),
NO-Argentinien.
Seite 321, 7. Textzeile bei Parulidae ändern: Statt „3 Gattungen‘: 4 Gattungen.
12. und 11. Zeile von unten ändern: Statt ‚fünf‘: sechs; statt ‚‚drei‘‘: vier.
Seite 336, 14. Zeile bei Icteria virens nach „‚Protonotaria‘‘ einfügen: Auch diese Ähnlich-
keit spricht für die Zugehörigkeit von Icteria zu den Parulidae, also für Fortnahme aus
der Gruppe ‚incertae sedis‘‘ [siehe SIBLEY & AHLQuısT, Postilla (New Haven) 187,
S. 5—7, 1982].
Seite 391, 11. Zeile von unten bei Molothrus badius nach ‚1964)‘‘ fortfahren: Ein
rosafarbener Gesamteindruck ist erstmalig bei badius badius festgestellt worden, abe,
nur bei zwei von 238 Eiern in der Provinz Buenos Aires, dagegen bei 135 von 263
Eiern des Molothrus rufoaxillaris derselben Gegend (FRAGA, Journ. f. Orn. 124, S. 190
1983).
5. Zeile von unten bei Molothrus badius nach „k = 1,37‘ in der Klammer fortfahren:
nach OTTOWw, 1. c., 1,33, nach FRAGA, 1. c., 1,34.
Seite 404, 15. Zeile bei Molothrus ater ater nach „3% BG“ fortfahren: Auch Molothrus
rufoaxillaris (8,1%, FRrAGA 1983, S. 191, entspricht einem Q-Gewicht von etwa 50 g),
M. bonariensis bonariensis (9,0%, gleiche Quelle, dort kein Q-Gewicht), M. bonariensis
venezuelensis (8,1%, siehe oben Seite 371), M. badius badius (9,4%, siehe oben, bzw.
9,1% nach FRAGA, ]. c.) legen im Verhältnis zum Weibchengewicht keine irgendwie
abnorm leichten oder schweren Eier (siehe Nachtrag zu Seite 168).
Nachträge zu Band III 167
Seite 426, 7.—1. Zeile von unten bei Molothrus badius ergänzen, daß 77 weitere Eier, aus
denen sicher bestimmte Junge schlüpften, 22,1— 25,2 x 16,5— 19,1, im Durchschnitt
23,9 x 17,5 mm maßen (k = 1,24—1,48, i. D. 1,34), 226 bis auf obige 77 durch Jungen-
bestimmung gesicherten nur nach Ei-Merkmalen bestimmte Eier ganz ähnlich 21,4—
25,3 x 16,5— 19,1, i. D. 23,7 x 17,7 mm maßen und 113 frisch 3,2—4,8, D,1;3 = 4,0 g
wogen (FRAGA, Journ. f. Orn. 124, S. 188, 1983) (Eier aus der Provinz Buenos Aires).
Das ergibt für kombinierte 191 Eier 21,5 — 27,0 x 16,5— 20,1, A = 23,9, B = 17,8 mm,
G-40g8k = 1,34.
Seite 427, 1.—7. Zeile bei Molothrus rufoaxillaris ergänzen, daß 43 weitere Eier, aus denen
sicher bestimmte Junge schlüpften, 21,6—25,2 x 17,0—19,2, i. D. 23,4 x 18,0 mm
maßen (k = 1,22—1,44, i. D. 1,30). 255 bis auf obige 43 nicht durch Jungenbestim-
mung gesicherte Eier maßen etwas weniger, nämlich 20,1— 25,8 x 15,6— 19,4, i. D.
23,2 x 17,8 mm. 117 von diesen wogen frisch 3,0—5,2g, i. D. 4,08 (Fraca, ].c.,
S. 189, in der Provinz Buenos Aires). Das ergibt für kombinierte 347 Eier 20,1— 25,8
Ze IA A— 33,1, B —- 17,1 mm, G — 3,858, k — 1,31.
Seite 436, 14. und 15. Zeile bei Serinus pusillus berichtigen, daß Osmaston (Ibis 1925,
S. 694) nur für 25 Eier Maße angab, und zwar A = 17,9 mm statt ‚16,7‘ mm.
Seite 449, vor 17. Zeile von unten als Absatz einfügen: Carpodacus trifasciatus. Eier
blau, braun gefleckt [ETCHECOPAR & HüE, Les oiseaux de la Chine 2 (Paris, Boubee)
1983, S. 558].
Seite 464, 7.—10. Zeile bei Oarduelis chloris turkestanica ergänzen, daß in S-Kirgisien
(Arslenbob) gefundene Eier die größeren Maße der östlichen Eier dieser Art bestäti-
gen: 9 Stück messen 19,8—22,5 x 15,0—16,0 mm (JANUSCHEWITSCH u.a. 1960,
S. 74), A = 21,2, B= 15,5 mm, G = 2,66 g, k = 1,37 (Beischebajew: 1/4 und 1/5).
Seite 478, vor 7. Zeile von unten einfügen: Carpodacus trifasciatus Verreaux. Bei ETCHE-
COPAR u. a. 1983, S. 558, ohne Maße beschrieben. SW-Kansu bis N-Yünnan (W-China).
Seite 490, rechte Spalte, 7. Zeile von oben und 2. von unten streichen, vor 12. von unten
einfügen: 8,7 g Lonchura bicolor nigriceps 9,3%.
‚Seite 545, 11. Zeile von unten bei Ploceus cucullatus collaris nach ‚„rötlichbraun‘“ ein-
fügen: (so auch Dos Santos 1970, S. 14).
Seite 570, 14.— 17. Zeile bei Montifringilla nivalis alpicola ergänzen, daß 4 neuere Maße
aus Kirgisien 26,0—27,0 x 18,0—19,0 mm betragen (JANUSCHEWITSCH u.a. 1960,
S. 101). Kombiniert mit unseren Listenwerten, ergibt sich eine Durchschnittsgröße
für 10 Eier von 24,3 x16,9 mm und ein Gewicht von 3,65 g, also etwa ebenso viel
wie bei der ebenso großen Nominatform (3,75 g).
Seite 598, 13. Zeile von unten bei Spreo superbus nach ‚S. 1420)‘ einfügen: So blau
wurden die Eier nach Harrısons Beobachtung (1966, S. 537) erst, nachdem sie, tief-
grün in die Sammlung gelegt, ein Jahr dort, im Dunkeln aufbewahrt worden waren.
Seite 616 Fußnote. Zusatz bei Sturnus vulgaris vulgaris nach ‚7,21 g‘“: S9 auf Fett und
andere Bestandteile untersuchte Eier aus Pennsylvania hatten ein Durchschnitts-
gesamtgewicht von 7,1 g (RICKLEFS, Condor 84, S. 339, 1982).
Rechte Spalte, 6. Zeile von unten nach ‚Kleinasien‘ einfügen: Diese Rasse ist in
weiten Teilen Nordamerikas, aber auch in Südafrika, Australien, Neuseeland und auf
Inseln des SW-Pazifiks eingebürgert.
Seite 645, 20. Zeile von unten bei Callaeas c. cinerea nach „Eycocoraz.“ fortfahren: Im
Querschnitt ist bei Callaeas (allein?) die Mammillenschicht blaß blau und die übrige
Schale grau (HArRıson 1966, S. 535).
768 Nicht erwähnte Arten
Liste der in Band III nicht erwähnten!) Arten von Passeriformes,
Familien Aegithalidae bis Corvidae
(Reihenfolge nach Check-list of birds of the world XII— XV, 1962— 1970)
(Halbfett gedruckte Namen: Oologisch wohl unbekannte Gattungen)
Aegithalidae (S. 3—5)
Aegithalos fuliginosus (China)
Remizidae (S. 5—6)
Anthoscopus punctifrons (S-Sahara: Tim-
buktu bis Eritrea)
— flavifrons (Ghana u. Gabun bis NO-
Zaire)
Paridae (8. 6—8, 13— 24)
Parus davidi (W-China, nach Eck 1980
sub lugubris)
— amabılis (Philippinen)
— leuconotus (NO-Afrika)
— fasciiventer (Zentral-Afrika)
— nuchalis (NW-Indien)
— semilarvatus (Philippinen)
incertae sedis
Hypositta corallirostris (s. Bd. II, S. 846,
dort richtig bei Vangidae und errore
corallvirostris)
Sittidae (S. 25—31, 34—35)
Sitta victoriae (Burma)
— yunnanensis (W-China)
— villosa (China)
— solangiae (Tonkin u. Annam)
— magna (Burma, N-Thailand, Yünnan)
Neositta papuensis (Neuguinea)
Daphoenisitta miranda (Neuguinea)
Certhiidae (S. 36— 41).
Certhia nipalensis?! (Himalaja)
Rhabdornithidae
Rhabdornis mysticalis (Philippinen)
— inornatus (Philippinen)
Dicaeidae (S. 42—49)
Melanocharis arfakiana (Neuguinea)
— nigra (Neuguinea)
— longicauda (Neuguinea u.
inseln)
— versteri (Neuguinea)
Rhamphocharis crassirostris (Neuguinea)
Prionochtlus olivaceus (Philippinen)
Nachbar-
!) Eingeschlossen 11 mit Fragezeichen
aufgenommene Arten, aber nicht Arten,
von denen keine Eimaße bekannt sind.
— maculatus (S-Burma bis Sumatra u.
Borneo)
— plateni (Philippinen)
— thoracicus (Malaysia, Borneo, Billiton)
Dicaeum annae (Sumbawa u. Flores)
— everetti (Malaysia, Borneo, Natuna
Inseln (auch sub agile)
— aeruginosum (Philippinen)
— proprium (Philippinen)
— nigrilore (Philippinen)
— anthonyi (Philippinen)
— bicolor (Philippinen)
— quadricolor (Philippinen, ausgestorben)
— retrocinctum (Philippinen)
— hypoleucum (Philippinen)
— Pygmaeum (Philippinen)
— nehrkorni (Celebes)
— vulneratum (Molukken)
— aeneum (Salomonen)
— tristrami (Salomonen)
— igniferum (Kleine Sunda Inseln)
— maugei (Kleine Sunda Inseln)
— monticolum (Borneo)
Oreocharis arfaki (Neuguinea)
Nectariniidae (S. 50—98)
Anthreptes fraseri (W- u. Zentral- Afrika)
— neglectus (O-Afrika)
— pallidigaster (O-Afrika)
Nectarinia balfouri (Socotra)
— hartlaubii (Prineipe vor W-Afrika)
— bannermani (Angola, Sambia,
Zaire)
— adelberti (W-Afrika)
— buettikoferi (Sumba)
— solaris (Kleine Sunda Inseln)
— coquerellii: (Mayotte)
— oustaleti (Angola, Sambia)
— Ioveridgei? (O-Tanganjika)
— rockefelleri (O-Zaire)
— bouvieri (Zentral-Afrika)
— chalcomelas (NO-Afrika)
— congensis (O-Zaire)
Aethopyga primigenius (Philippinen)
— boltoni (Philippinen)
SW-
i
Erkrankungen der Zootiere
Verhandlungsbericht des XXIV. Internationalen Symposiums über die
Erkrankungen der Zootiere vom 19. Mai bis 23. Mai 1982 in Veszprem
Herausgegeben von R. Ippen und H.D. Schröder
1982. 482 Seiten — 97 Abbildungen — 95 Tabellen — 8° — 80,— M
Bestell-Nr. 7630536 (2136/16)
Seit 1959 werden jährlich Symposien über die Erkrankungen der Zootiere
veranstaltet. In Form von Verhandlungsberichten erscheinen sämtliche
zu den Symposien angemeldeten Referate bereits vor dem jeweiligen
Symposium und bieten somit eine sehr gute Diskussionsgrundlage.
Bitte richten Sie Ihre Bestellungen an eine Buchhandlung
AKADEMIE-VERLAG
DDR -1086 Berlin, Leipziger Str. 3—4
a WATTE, IN De WE x ‚Pr BR - fi
"Atlas der Verbreitung
1982. 68 Seiten — 9 zweifarbige Verbreitungskarten - — 4° — %,- m }\ Di
"Ökologe und der Evolutionsforscher bedarf eines Werkes, das rasch ı Inc Be $
ten) enthält.
- Bitte richten Sie Ihre Bestellungen an eine Buchhandlung
palaearktischer Vögel
Begründet von E. Stresemann j und L. A. Portenko }
Bearbeitet von I. A. Neufeldt, L. A. Portenko;.J. Stübs,
E. v. Vietinghoff-Scheel, K. Wunderlich
Herausgegeben von H. Dathe und L.A. Neufeldt
Bestell-Nr. 7629543 (3034/10) Aus
Der Ornithologe, aber auch der Tiergeograph, der Systematiker, 3
verläßlich über die geographische Verbreitung von Vögeln informiert. er
Die wenigen bisher unternommenen Versuche in dieser Richtung nt-
behren der nur in jahrelanger Arbeit zu erlangenden Genauigkeit. In en 2
engem Zusammenwirken mit namhaften und erfahrenen Spezialisten des BR
In- und Auslandes entsteht dieses Atlaswerk, das die Verbreitungs- ehe
grenzen einer größeren Zahl (etwa 200—250) von Arten palaearktischor
Vögel auf zweifarbigen Karten darstellt. Jeder Karte ist ein mehrere
Seiten umfassender Textteil beigelegt, der außer den die Karten erläu- I
Ri
ternden Listen ausführliche Angaben über Verwandschaft, Gliederung, 2 Hr
di Ab. fra
ij
»
Be
Ökologie und Wanderungen dieser Vögel (einschließlich einiger an
AKADEMIE-VERLAG
DDR - 1086 Berlin, Leipziger Str. 3—4
\
CH DER OOLOGIE
Rt HERAUSGEGEBEN UND ERGÄNZT VON ö N
0... Prof. Dr. WILHELM MEISE RE
Zoologisches Institut und Zoologisches Museum Hamburg “ he ©
X AN \ EV r % ni 5, N =
es, Nun. Lieferung 4 ne N 5
| sr | Rs RE
rg | 5) | 3 ai
-. = ? i
N ri ( = 27 F
} N ; u
x N iR 5
D } / ©
- \$ \
f) ? =
i DR Er
| \ x h) \ Pr i
ER f { Er
I% SL “ Na) : Er ; a ‘ nR £
= [
AKADEMIE-VERLAG - BERLIN a
N >
z ‚ a A %
1984 | Be
% eh‘
5 EN \ ER
u N a u ne “
m Li;
t i \
. u
x 4 x
Ey \ Bi
. N Ne RR
) $ BE = N r Y R
4 4 5 e .
- m
F Bogister der Yalperisekahrkichein und en deutschen Vogelnamen EIN RE “ R,
BER IE: Jene Benichuenunen., PERU RR PRINT ...
f | \ y -
l
ö n
x x n 3
h
5 4
$ i
: Erächiännde im Akademie Verlag, DDR- 1086 Berlin, Laer Straße 3
Se © © Akademie-Verlag Berlin 1984 “
Lizenznummer: 202 . 100/476/84
Printed in the German Democratic Republie
Gesamtherstellung: VEB Druckhaus „Maxim Gorki“ ‚ 7400 Altenburg
En, i N LSVIS6S.- 8
. = N Bektellnuniindr: 763 243 5 (3037/40)
e 01400 R
DR
ER e= 7.
Nicht erwähnte Arten
— flagrans (Philippinen)
— duyvenbodei (Sanghir Inseln)
— christinae (SO-China, Vietnam, Hainan)
Arachnothera crassirostris (Malayische
Halbinsel, Sumatra, Borneo)
— flavigaster (ebendort)
— clarae (Philippinen)
— juliae (N-Borneo)
Zosteropidae (S. 99— 112)
Zosterops salvadorii (Angano bei Sumatra)
— atricapilla (Sumatra, Borneo)
— nigrorum (Philippinen)
— consobrinorum (Celebes)
— grayı (Große Kai Insel)
— uropygialis (Kleine Kai Insel)
— anomala (Celebes)
— atriceps (Molukken)
— muysorensis (Biak bei Neuguinea)
— fuscicapilla (Neuguinea u. Insel Goode-
nough)
— buruensis (Buru)
— kuehni (Amboina u. Ceram)
— metcalfii (Salomonen)
— rennelliana (Rennell)
— vellalavella (Vellalavella u. Bagga)
— luteirostris (Gizo u. Ganonga in Salo-
monen)
— rendovae (Salomonen)
— murphyi (Kulambangra in Salomonen)
— ugiensis (Salomonen)
— stresemanni (Malaita)
— :sanctaecrucıs (Santa Cruz)
— samoensis (Savaii in Samoa)
— minuta (Lifu in Gesellschafts Inseln)
— inornata (ebendort)
Woodfordia lacertosa (Santa Cruz)
Rukia palauensis (Palau Inseln)
— oleaginea (Yap in Carolinen)
— ruki (Truk in Carolinen)
— longirostra (Ponape& in Carolinen)
Tephrozosterops stalkeri (Ceram)
Madanga ruficollis (Buru)
Lophozosterops pinaiae (Ceram)
— goodfellowi (Philippinen)
— squamiceps (Celebes)
— superciliaris (Sumbawa, Flores)
Oculoeineta squamifrons (Borneo)
Heleia muelleri (Timor)
Chlorocharis emiliae (Borneo)
incertae sedis
Hypoeryptadius cinnamomeus (Philippi-
nen)
49 Oologie, 40. Lieferung
769
Zosteropidae (Fortsetzung)
Zosterops ficedulina (Principe, Säo Tome
vor W-Afrika)
— modesta (Mah& in Seychellen)
Speirops brunnea (Fernando Po)
Meliphagidae (S. 113—164)
Timeliopsis fulvigula (Neuguinea)
— griseigula (Neuguinea)
Melilestes bougainvillei (Bougainville)
Toxorhamphus novaeguineae (Neuguinea u.
Nachbarinseln)
Lichmera lombokia (Lombok, Sumbawa,
Flores)
— argentauris (Molukken u. W-papuani-
sche Inseln)
— deningeri (Buru)
— monticola (Ceram)
— flavicans (Timor)
— notabilis (Wetar in Kleinen Sunda
Inseln)
Myzomela albigula (Louisiade Archipel)
— cruentata (Japen, Neuguinea, Bismarck
Archipel)
— nigrita (Neuguinea bis Bismarck Archi- -
pel)
— pulchella (Neu Irland)
— kuehni (Wetar)
— adolphinae (Neuguinea)
— chermesina (Insel Rotuma)
— lafargeı (Salomonen)
— melanocephala (Salomonen)
— eichhorni (Salomonen)
‚ — malaitae (Malaita)
— tristrami (Salomonen)
— vulnerata (Timor)
— rosenbergii (Neuguinea u. Goodenough)
Meliphaga mimikae (Neuguinea)
— albonotata (Neuguinea)
— vicina (Louisiade Archipel)
— flavirietus (Neuguinea)
— albilineata (N-Australien)
— inexpectata (Guadalcanal in Salomo-
nen)
— reticulata (Timor)
— polygramma (Neuguinea u. W-papuani-
sche Inseln)
— subfrenata (Neuguinea)
Pycnopygius ixoides (Neuguinea)
— stictocephalus (Neuguinea, Aru Inseln
u: Salawati)
Philemon brassi (NW-Neuguinea)
— inornatus (Timor)
— gigolensis (N-Molukken)
— fuscicapillus (N-Molukken)
— subcorniculatus (Ceram)
— molucecensis (Buru, Tenimber- u. Kai
Inseln)
— eichhorni (Neu Irland)
— albitorques (Admiralitäts Inseln)
— diemenensis (Neu Caledonien u. Gesell-
schafts Inseln)
Ptiloprora plumbea (Neuguinea)
— meekiana (Neuguinea)
— erythropleura (Neuguinea)
Melidectes fuscus (Neuguinea)
— princeps (Neuguinea)
— leucostephes (Neuguinea)
— belfordi (Neuguinea)
— torgquatus (Neuguinea)
Melipotes gymnops (Neuguinea)
— ater (Neuguinea)
Vosea whitemanensis (Neu Britannien)
Myza celebensis (Celebes)
— sarasinorum (Celebes)
Meliarchus sclateri (San Christobal in
Salomonen)
Gymnomyza viridis (Fidschi Inseln)
— aubryana (Neu Caledonien)
Moho braccatus (Kauai)
— bishopi (Molokai, ausgestorben)
— apicalis (Oahu, ausgestorben)
— nobilis (Hawaii, ausgestorben?)
Chaetoptila angustipluma (Hawaii, aus-
gestorben)
Phylidonyris undulata (Neu Caledonien)
— notabilis (Neue Hebriden)
Emberizidae (S. 165—277)
Latoucheornis siemsseni (China)
Emberiza socotrana (Socotra)
— affinis (Gambia bis Abessinien u.
Uganda)
— koslowi (Tibet bis W-China, besser
hinter leucocephala)
Ammodramus baileyi (Mexico)
Aimophila mystacalis (Mexico)
— sumichrasti (Mexico)
— notosticta (Mexico)
Torreornis inerpectata (Cuba)
Phrygilus dorsalis (Bolivien, Chile, Argen-
tinien)
— erythronotus (Peru, Bolivien, Chile)
— carbonarius (Argentinien)
Melanodera zanthogramma (Chile, Argen-
tinien, Falkland Inseln)
Amaurospiza
Nicht erwähnte Arten
Haplospiza rustica (Mexico bis Bolivien
u. Venezuela)
Acanthidops bairdii (Costa Rica)
Lophospingus griseocristatus (Bolivien,
Argentinien)
Nesospiza wilkinsi (Tristan da Cunha)
Idiopsar brachyurus (Peru, Bolivien,
Argentinien)
Piezorhina cinerea (Peru)
Xenospingus concolor (Peru, Chile)
Incaspiza pulchra (Peru)
— ortizi (Peru) R
— watkinsi (Peru)
Poospiza boliviana (Bolivien)
— alticola (Peru)
— hypochondria (Bolivien, Argentinien)
— ornata (Argentinien)
— rubecula (Peru)
— garleppi (Bolivien)
— baeri (Argentinien)
— caesar (Peru)
Sicalis taczanowskii (Ecuador, Peru)
Emberizoides ypsiranganus (1979, Para-
guay, SO-Brasilien)
Embernagra longicauda (Brasilien)
Sporophila faleirostris (Brasilien)
— ardesiaca (Brasilien)
— melanops (Brasilien)
— albogularis (Brasilien)
— nigrorufa (W-Brasilien, Bolivien)
— insulata (SW-Columbien)
— hypochroma (Bolivien, Argentinien)
— palustris (Brasilien, Uruguay, Argen-
tinien, Paraguay)
— cinnamomea (Brasilien, Paraguay)
— melanogaster (Brasilien)
moesta (Brasilien, Argen-
tinien)
Dolospingus fringilloides (Brasilien)
Catamenia inornata (Venezuela bis Argen-
tinien)
— homochroa.(Venezuela bis Bolivien)
— oreophila (Columbien) *
Lozxigilla portoricensis (Puerto Rico)
Melanospiza richardsoni (St. Lucia in
Kleinen Antillen)
Camarhynchus psittacula (Galapagos)
— pauper (Galapagos)
— heliobates (Galapagos)
Pinarolozias inornata (Cocos Insel)
Pipilo socorroensis (Socorro bei Mexico)
Melozone leucotis (Mexico bis Costa Rica)
Nicht erwähnte Arten
Arremon schlegeli (Columbien, Venezu-
ela)
— abeillei (Ecuador, Peru)
Arremonops tocuyensis (Columbien, Vene-
zuela)
Atlapetes pallidinucha (Venezuela bis
Ecuador)
— leucopis (Columbien, Ecuador)
— melanocephalus (Columbien)
— flaviceps (Columbien)
— fuscooliwaceus (Columbien)
— tricolor (Columbien bis Peru)
— nationi (Ecuador bis Peru)
— leucopterus (Ecuador bis Peru)
— albiceps (Ecuador, Peru)
— pallidiceps (Ecuador)
— rufigenis (Peru)
— semirufus (Venezuela, Columbien)
— personatus (Venezuela, N-Brasilien)
— fulviceps (Bolivien, NW-Argentinien)
Oreothraupis arremonops (Columbien,
Ecuador)
Pselliophorus luteoviridis (Panama, Uni-
cum)
Urothraupis stolemannı (Columbien,
Ecuador)
Charitospiza eucosma (Brasilien, Argen-
tinien)
Coryphaspiza melanotis (Brasilien, Boli-
vien, Paraguay, Argentinien)
Paroaria baeri (Brasilien)
Catamblyrhynchus diadema (Venezuela
u. Columbien bis NW-Argentinien)
OCaryothraustes humeralis (Columbien bis
Bolivien u. Brasilien)
Rhodothraupis celaeno (Mexico)
Periporphyrus erythromelas (SO-Vene-
zuela bis NO-Brasilien)
Saltator mazillosus (Brasilien, Paraguay,
Argentinien, ?!Uruguay)
— cinctus (Ecuador, Unicum)
Passerina leclancherii (Mexico)
— caerulescens (Brasilien, SO-Bolivien)
Thraupidae (S. 278—320)
Neothraupis jasciata (Brasilien,
vien, Paraguay)
Conothraupis speculigera (Ecuador, Peru)
— mesoleuca (Brasilien)
Lamprospiza melanoleuca
Brasilien, Peru, Bolivien)
Sericossypha albocristata (Venezuela bis
Peru)
Boli-
(Guayanas,
49*
ya!
Chlorospingus tacarcunae (Panama, Co-
lumbien)
— inornatus (Panama)
— punctulatus (Panama)
— semifuscus (Columbien, Ecuador)
— zeledoni (Costa Rica)
— pileatus (Costa Rica, Panama)
— parvirostris (Columbien bis Bolivien)
— flavigularıs (Panama bis Peru)
— flavovirens (Ecuador, Columbien)
— canigularıs (Costa Rica u. Venezuela
bis Peru) |
Hemispingus calophrys (Bolivien)
— paradısi (1974, Peru)
— superciliaris (Venezuela bis Peru u.
Bolivien)’
— reyi (Venezuela)
— frontalis (Columbien u. Venezuela bis
Peru)
— melanotis (Columbien u. Venezuela bis
Bolivien)
— goeringi (Venezuela)
— rufosuperciliaris (1974, Peru)
— verticalis (Venezuela bis Ecuador)
— zanthophthalmus (Peru)
— trifasciatus (Peru, Bolivien)
Thlypopsis fulviceps (Columbien, Vene-
zuela)
— ornata (Columbien bis Peru)
— vpectoralis (Peru)
— inornata (Peru)
— ruficeps (Peru, Bolivien, Argentinien)
Hemithraupis ruficapilla (Brasilien)
— flavicollis (Panama bis Peru u. Brasi-
lien)
Chrysothiypis chrysomelas (Costa Rica,
Panama)
— salmoni (Columbien, Ecuador)
Nemosia rourei (Brasilien)
Mitrospingus oleagineus (Venezuela bis
Brasilien u. Guyana)
Chlorothraupis olivacea (Panama bis Ecua-
dor)
— stolzmanni (Columbien, Ecuador)
Orthogonys chloricterus (Brasilien)
Lanio fulvus (Columbien u. Guayanas
durch Brasilien bis Peru)
— versicolor (Peru, Brasilien, Bolivien)
— aurantius (Mexico, Guatemala, Hon-
duras)
Creurgops verticalis (Venezuela bis Peru)
— dentata (Peru, Bolivien)
772
Heterospingus zanthopygius (Costa Rica
bis Ecuador)
Tachyphonus rufiventer (Peru, Brasilien)
— delatrii (Nicaragua bis Ecuador)
Habia atrimazillaris (Costa Rica)
— cristata (Columbien)
Piranga roseogularis (Mexico, Guatemala)
— rubriceps (Columbien bis Peru)
Calochaetes coccineus (Columbien bis
Peru)
Ramphocelus melanogaster (Peru)
Thraupis cyanoptera? (Brasilien, Argenti-
nien, Paraguay)
Buthraupis arcaei (Costa Rica, Panama)
— melanochlamys (Columbien)
— rothkschildi (Columbien, Eduador)
— edwardsi (Columbien, Ecuador)
— aureoeincta (Columbien)
— montana (Venezuela bis Peru u. Boli-
vien)
— eximia (Venezuela, Columbien Ecua-
dor)
— aureodorsalis (1974, Peru)
— wetmorei (Columbien Ecuador)
Wetmorethraupis sterrhopteron (Peru)
Anisognathus lacrymosus (Columbien u.
Venezuela bis Peru)
— notabilis (Columbien)
Iridosornis porphyrocephala (Columbien,
Ecuador)
— analis (Ecuador, Peru)
— jelskii (Peru, Bolivien)
— rufivertex (Columbien u. Venezuela bis
Peru)
Dubusia taeniata (Columbien u. Vene-
zuela bis Peru)
Delothraupis castaneoventris (Peru, Boli-
vien)
Pipraeidea melanonota (Columbien u.
Venezuela bis Argentinien, Uruguay,
Brasilien)
Euphonia plumbea (Venezuela, Guyana,
Surinam, N-Brasilien)
— concinna (Columbien)
— saturata (W-Columbien, W-Ecuador,
NW-Peru)
— finschi (Guayanas, Venezuela, Brasi-
lien)
— fulvierissa [Costa Rica (?), Panama bis
Ecuador]
— chrysopasta (Columbien u. NO-Brasi-
lien bis Bolivien u. Peru)
Nicht erwähnte Arten
— mesochrysa (Columbien bis Bolivien)
— anneae (Costa Rica bis Columbien)
— zwanthogaster (Panama bis Guyana,
Brasilien, Bolivien)
Chlorophonia flavirostris (Columbien, Eeua-
dor)
Chlorochrysa phoenicotis
Ecuador)
— calliparaea (Columbien bis Bolivien)
— nitidissima (Columbien)
Tangara palmeri (Panama bis W-Ecuador)
— fastuosa (Brasilien)
— cyanoventris (Brasilien)
— johannae (Columbien, Ecuador)
— schrankii (Columbien u. Venezuela bis
Peru, Bolivien, Brasilien)
— florida (Costa Rica bis Columbien)
— chrysotis (Columbien bis Bolivien)
— parzudaki (Columbien u. Venezuela
bis Peru)
— zanthogastra (Columbien bis Brasilien
u. Bolivien)
— punctata (Venezuela u. NO-Brasilien
bis Bolivien)
— varia (Venezuela, Guayanas, N-Brasi-
lien) a
— rufigula (Columbien, Ecuador)
— lavinia (Guatemala bis Ecuador)
— peruviana (Brasilien)
— preciosa? (SO-Brasilien, Uruguay, Para-
guay, Argentinien)
— rufigenis (Venezuela)
— ruficervix (Columbien bis Bolivien)
— labradorides (Columbien bis Peru)
— cyanotis (Columbien u. Guyana bis
Bolivien)
— nigrocincta (Columbien, Brasilien bis
Bolivien)
— dowii (Costa Rica, Panama)
— vassorii (Columbien u. Venezuela bis
Bolivien)
— viridicollis (Ecuador, Peru)
— argyrofenges (Peru, Bolivien)
— pulcherrima (Columbien bis Peru)
— callophrys (Columbien bis Bolivien,
Brasilien)
Dacnis albiventris (Columbien u. O-Peru
bis Zentral-Brasilien)
— lineata (Columbien u. Guayanas bis
Peru und Brasilien)
— flaviventer (Columbien bis Peru, Boli-
vien, Brasilien)
(Columbien,
Nicht erwähnte Arten
— hartlaubi (Columbien)
— nigripes (Brasilien)
— venusta (Costa Rica bis Ecuador)
— viguiri (Panama, Columbien)
— berlepschi (Columbien, Ecuador)
C'yanerpes nitidus (Columbien bis Peru u.
Brasilien)
Xenodacnis parina (Peru)
Oreomanes fraseri (Columbien bis Boli-
vien)
Diglossa lafresnayvi (Columbien bis Boli-
vien)
— venezuelensis (Venezuela)
— duidae (Venezuela)
— major (Venezuela bis Brasilien)
— indigotica (Columbien bis Ecuador)
— glauca (Columbien bis Bolivien)
Parulidae (S. 321—354)
Dendroica angelae (1972, Puerto Rico)
Catharopeza bishopi (St. Vincent)
Geothlypis flavovelata (N-Mexico)
— rostrata (Bahamas)
— spectiosa (Mexico)
— nelsoni (Mexico)
Leucopeza semperi (St. Lucia)
Myioborus brunniceps (Venezuela bis Ar-
gentinien)
— pariae (Venezuela)
— cardonai (Venezuela)
— melanocephalus (Columbien bis Boli-
vien)
— flavivertex (Columbien)
— albifacies (Venezuela)
Basileuterus fraseri (Ecuador u. Peru)
— chrysogester (Columbien bis Peru)
— luteoviridis (Columbien u. Venezuela
bis Peru u. Bolivien)
— signatus (Peru bis Argentinien)
— griseiceps (Venezuela)
— basilicus (Columbien)
— cinereicollis (Columbien,
Venezuela)
— conspeeillatus (Columbien)
— trifasciatus (Ecuador, Peru)
— hypoleucus (Brasilien, Paraguay)
— leucophrys (Brasilien)
- incertae sedis
Granatellus venustus (Mexico)
— pelzelni (Venezuela u. Guayanas bis
Bolivien u. Brasilien)
Conirostrum speciosum (O-Columbien u.
Cayenne bis Argentinien)
773
— leucogenys (Panama, Columbien, Vene-
zuela)
— margaritae (Brasilien, Peru)
- — ferrugineiventre? (Peru, Bolivien)
— tamarugensis (1972, Peru, Chile)
— rufum (Columbien)
— albifrons (Columbien u. Venezuela bis
Bolivien)
incertae sedis
Nephelornis oneilli (1976, Peru)
Drepanididae (8. 355—358)
Palmeria dolei (Maui u. Molokai)
Drepanis funerea (Molokai, ausgestorben)
— pacıfica (Hawaii, ausgestorben)
Ciridops anna (Hawaii, ausgestorben)
Viridonia sagittirostris (Hawaii, ausge-
storben)
Hemignathus obscurus (Hawaii Inseln)
— lucidus (Hawaii Inseln)
Pseudonestor xanthophrys (Maui)
Loxioides palmeri (Hawaü, ausgestorben)
— flaviceps (Hawaii)
— kona (Hawaii, ausgestorben)
Melamprosops phaeosoma (1974, Maui in
Hawaii Inseln)
Vireonidae (S. 359—368)
Cyclarhıs nigrirostris (Columbien, Ecua-
dor)
Vireolanius melitophrys (Mexico, Guate-
mala)
— pulchellus (Mexico bis Columbien u.
Venezuela)
— leucotis (Columbien u. Guayanas bis
Bolivien u. Brasilien) ;
Vireo pallens (Mexico bis Costa Rica)
— caribaeus (St. Andrews)
— bairdi (Cozumel bis O-Mexico)
— nelsoni (Mexico)
Hylophilus thoracicus (Columbien u.
Guayanas bis Bolivien u. Brasilien)
— semicinereus (Venezuela bis N-Brasi-
lien)
— sclaterı (Venezuela, Guyana, Brasilien)
— brunneiceps (Columbien, Venezuela,
Brasilien)
— semibrunneus (Columbien, Venezuela,
Ecuador)
— hypoxanthus (Columbien, Venezuela bis
Bolivien, Brasilien)
Icteridae (S. 369—429)
Psarocolius oseryi (Ecuador, Peru)
— latirostris (Ecuador, Peru, Brasilien)
774
— cassini (Columbien)
— bifasciatus (N-Brasilien)
— guatimozinus! (Panama, Columbien)
Cacicus koepckeae (Peru)
— leucoramphus (Columbien u. Venezuela
bis Peru)
— sclateri? (Ecuador, Peru)
Icterus graceannae (Ecuador, Peru)
— xantholemus (Ecuador, Unicum, frag-
liche Art)
— maculalatus (Mexico bis El Salvador)
Agelaius zanthophthalmus (1969, Ecuador,
Peru)
Curaeus forbesi (Brasilien)
Macroagelaius subalaris (Columbien,
Venezuela, Guyana, N-Brasilien)
Fringillidae (S. 430—486)
Serinus thibetanus? (Nepal bis Sikang)
— koliensis (O-Zaire bis W-Kenia)
— citrinipectus (S-Mocambique bis S-
Rhodesien, wohl sub atrogularis)
— menachensis (Arabien, Yemen)
— ankoberensis (1974, ...)
— burtoni (Kamerun bis Tanganjika)
— rufobrunneus (Principe u. Säo Tome)
— leucopterus (SW-Kapland)
— estherae (Sumatra, Java, Philippinen)
Neospiza concolor (Säo Tome)
Rhynchostruthus socotranus
Yemen, Arabien, Socotra)
Carduelis atriceps (Chiapas, Guatemala,
wohl sub pinus)
— spinescens (Columbien, Venezuela)
— yarrellii (O-Brasilien, Venezuela)
— crassirostris (Peru, Bolivien, Argen-
tien, Chile)
— dominicensis (Hispaniola)
— siemiradzkii (Ecuador)
— olivacea (Ecuador bis Bolivien)
— uropygialis (Peru, Argentinien, Chile)
Acanthis yemenensis (Yemen)
— johannis (SO-Somalia)
Urocynchramus pylzowi (W-China)
Carpodacus rubescens (Himalaja)
— eos (W-China)
— vinaceus (Kansu bis Szetschwan, Tai-
wan)
— edwardsii? (Himalaja, W-China)
— rhodopeplus? (Himalaja bis N-Yünnen)
— roborowskii (Tsinghai in W-China)
Chaunoproetus ferreorostris (Bonin, aus-
gestorben)
(Somalia,
Nichterwähnte Arten
Pinicola subhimachalus (Himalaja O bis
N-Yünnan, ?NO-Burma)
Pyrrhula leucogenys (Philippinen)
Coceothraustes affinis (Hazara, Himalaja
bis N-Yünnan u. Kansu)
— abeillei (Maxico, Guatemala)
Pyrrhoplectes epauletta (Himalaja ©
bis Yünnan)
Estrildidae (S. 487 —516)
Nesocharis capistrata (Gambia bis Sudan)
Crypsospiza jacksoni (O-Zaire)
— shelleyi (O-Zaire, Ruanda, W-Uganda)
Spermophaga poliogenys (NO-Zaire, W-
Uganda)
Euschistospiza dybowskii (Sierra Leone bis
Sudan)
Lagonosticta landanae (Cabinda bis zum
Oberen Cuanza in Angola)
Estrilda thomensis (W-Angola)
— rufibarba (SW-Arabien)
— nigriloris (Mittel-Zaire)
— charmosyna (Somalia,
Tanganjika)
Ortygospiza gabonensis (Span. Guinea bis
Uganda u. Angola)
Oreostruthus fuliginosus (Neuguinea)
Erythrura viridifacies (Luzon)
— tricolor (Timor u. benachbarte Inseln)
— coloria (Mindanao)
— papuana (Neuguinea)
Lonchura tristissima (Neuguinea)
— leucosticta (Neuguinea)
— quinticolor (Kleine Sunda Inseln u.
Timor Gruppe)
— vana (Neuguinea)
— nevermanni (Neuguinea)
— hunsteini (Neu Irland, Neu Hanover,
Ponape)
— teerink: (Neuguinea)
— monticola (Neuguinea)
— montana (Neuguinea)
Padda fuscata (Timor u. Samao)
Ploceidae (S. 517—590)
Plocepasser rufoscapulatus
Malawi u. Sambia)
Passer castanopterus (Somalia bis Abessi-
nien u. Kenia)
Montifringilla blanfordi (China bis Kasch-
mir u. Sikkim)
— theresae (Afghanistan)
Ploceus bannermani (Kamerun)
— batesi (Kamerun)
S-Sudan bis
(Angola bis
Nicht erwähnte Arten
— nigrimentum (Angola u. Zentral-Afrika
bei Brazzaville)
— subpersonatus (Gabun bis Kongo- Mün-
dung)
— spekeoides (Uganda)
— weynsi (O-Zaire, Uganda, W-Tangan-
jika)
— golandi (Kenia)
— dicrocephalus (Abessinien bis Kenia)
— aureonucha (NO-Zaire)
— albinucha (Sierra Leone bis Uganda,
Fernando Po)
— flavipes (NO-Zaire)
— preussi (Sierra Leone bis Uelle)
— dorsomaculatus (Kamerun, Zaire)
— olivaceiceps (NO-Tanganjıka bis Mo-
cambique)
— angolensis (Angola, SW-Afrika bis SO-
Zaire)
Malimbus coronatus (Kamerun bis Zaire)
— cassini (S-Kamerun, Gabun bis Zaire)
— racheliae (Nigeria bis Gabun)
— ballmannı (1974, Elfenbeinküste u.
!Sierra Leone)
— erythrogaster (O-Nigeria bis Zaire)
- Foudia bruante (Reunion, ausgestorben,
fragliche Art)
— sechellarum (Seychellen)
Euplectes aureus (Angola, Säo Tome)
Sturnidae (S. 591—622)
Aplonis zelandica (Neue Hebriden bis
Santa Cruz Inseln)
— santovestris (Neue Hebriden)
— vpelzelnı (Ponape in Carolinen)
— corvina (Kusaie in Carolinen, ausge-
storben)
— mavornata (Gesellschafts Inseln, ausge-
storben)
— cinerascens (Rarotonga in Cook Inseln)
— striata (Neu Caledonien, Loyalty In-
seln)
— crassa (Timorlaut)
— insularis (Rennell)
— mysolensis (Inseln bei Neuguinea bis
Banggai Inseln u. ?Celebes)
— magna (Inseln der Geelvink-Bucht)
— mystacea (Neuguinea)
Poeoptera kenricki (Kenia bis Tanganjika)
— stuhlmanni (Abessinien bis O-Zaire)
Grafisia torquata (Kamerun, Zentral-
Afrik. Rep., N-Zaire)
Onychognathus frater (Socotra)
775
— fulgidus (Sierra Leone, Fernando Po,
Säo Tome bis Angola u. Uganda)
— salvadorii (Somalia, Abessinien, Kenia)
Lamprotornis iris (Franz. Guinea bis
Elfenbeinküste)
— cupreocauda (Sierra Lesone bis Ghana)
— acuticaudus (Angola bis SW-Afrika u.
Tanganjika-See)
— ornatus (Principe vor W-Afrika)
Cinnyrieinclus femoralis (S-Kenia, N-Tan-
ganjıka)
— sharpii (Sudan bis Tanganjika u. O-
Zaire)
Cosmopsarus unicolor (S-Kenia, Tangan-
jika)
Neeropsar
storben)
Fregilupus varius (Reunion, ausgestor-
ben)
Mino anais (Neuguinea mit Inseln Sala-
wati u. Japen)
Basilornis celebensis (Celebes)
— galeatus (Banggai u. Sula)
— corythaix (Ceram)
— miranda (Mindanao)
Streptoeitta albicollis (Celebes)
— albertinae (Sula Inseln)
Enodes erythrophrys (Celebes)
Oriolidae (S. 623—630)
Oriolus phaeochromus (Halmahera)
— forsteni (Ceram)
— bouroensis (Buru u. Tenimber Inseln)
— viridifuscus (Timor u. Wetar)
— albiloris (Luzon)
— isabellae (Luzon)
— chlorocephalus (NO-Tanganjıka bis
Mocambique)
— crassirostris (Säo Tome)
— brachyrhynchus (Sierra Leone u. N-
Angola bis Kenia)
— monacha (Eritrea, Abessinien)
— nigripennis (Sierra Leone, Fernando
Po u. Angola bis SO-Sudan u. Uganda)
— hosii (Borneo)
— mellianus (Zentral- u. S-China)
Sphecotheres viridis (Timor)
— hypoleucus (Wetar)
Dicruridae (S. 631—645)
Dierurus fuscipennis (Gran Comoro)
— balicassius (Philippinen)
— megarhynchus (Neu Irland)
— montanus (Celebes)
leguati (Rodriguez,
ausge-
776
Grallinidae (S. 646 —648)
Grallina brujni (Neuguinea)
Artamidae (S. 649—655)
Artamus monachus (Celebes,
Sula Inseln)
— mazimus (Neuguinea)
— insignis (Neu Britannien, Neu Irland)
Cracticidae (S. 654—662)
Cracticus lousiadensis (Tagula im Loui-
siade Archipel)
Ptilonorhynchidae (S. 663—671)
Archboldia papuensis (Neuguinea)
Amblyornis inornatus (Neuguinea)
— flavifrons (Neuguinea)
Sericulus aureus (Neuguinea)
— bakeri (Neuguinea)
Paradisaeidae (S. 672—694)
Loria loriae (Neuguinea)
Loboparadisea sericea (Neuguinea)
Semioptera wallacei (Halmahera, Bat-
jan)
Paradigalla carunculata? (Neuguinea)
Drepanornis bruijnii (Neuguinea)
Epimachus fastosus (Neuguinea)
Astrapia nigra (Neuguinea)
— splendidissima (Neuguinea)
Parotia sefilata (Neuguinea)
— carolae (Neuguinea)
— wahnesi (Neuguinea)
Pteridophora alberti (Neuguinea)
Banggai,
Nicht erwähnte Arten
Diphyllodes respublica (Batanta, Waigeu)
Paradisaea decora (d’ Entrecasteaux Archi-
pel)
Corvidae (S. 695— 762)
Aphelocoma unicolor (Mexico bis El Salva-
dor u. Honduras)
Cyanolyca pulchra (Columbien bis Ecua-
dor)
— cucullata (Mexico bis Panama)
— pumilo (Mexico bis EI Salvador u.
Honduras)
— mirabilis (Mexico, Guatemala)
— argentigula (Costa Rica, Panama)
Cyanocorax heilprini (Venezuela,
Brasilien)
— cayanus (SO-Venezuela, Guayanas, N-
Brasilien)
Perisoreus internigrans (Szetschwan, Si-
kang)
Temnurus temnurus (Tonkin, Annam,
Hainan)
Corvus typicus (Celebes)
— florensis (Flores)
— kubaryi (Guam, Rota, beide in Maria-
nen)
— validus (Molukken)
— woodfordi (Salomonen)
— fuscicapillus (Aru- u. W-papuanische
Inseln, Neuguinea)
— tristis (Neuguinea u. Nachbarinseln)
NW-
Pr
Kws
x
5
Br su)
u
I
’
A
a
A sh
y
0
& FR)
Ss
‚ir.
A
(NS
a
I ‚» e\
k “
DR
MAX SCHÖNWETTER
HANDBUCH DER OOLOGIE
HERAUSGEGEBEN UND ERGÄNZT VON
Prof. Dr. WILHELM MEISE
Zoologisches Institut und Zoologisches Museum Hamburg
BAND III
(Passeriformes 2)
Lieferungen 23—40
AKADEMIE-VERLAG - BERLIN
1984
Erscheinungsdaten der Lieferungen
1980 28. Lieferung: Seite 1—64, Tafel 1
1981 29. Lieferung: Seite 64—128, Tafel 2
30. Lieferung: Seite 129—192, Tafel 3
31. Lieferung: Seite 193— 256, Tafel 4
32. Lieferung: Seite 257—320, Tafeln 5 und 6
33. Lieferung: Seite 321—384, Tafel 7
1982 34. Lieferung: Seite 385—448, Tafeln 8 und 9
1983 35. Lieferung: Seite 449—512, Tafel 10
36. Lieferung: Seite 513— 576
37. Lieferung: Seite 577—640, Tafel 11
38. Lieferung: Seite 641— 704, Tafel 12
39. Lieferung: Seite 705— 768, Tafeln 13 und 14
1984 40. Lieferung: Seite 769— 879, I-XVI
Erschienen im Akademie-Verlag, DDR - 1086 Berlin, Leipziger Straße 3—4
© Akademie-Verlag Berlin 1984
Lizenznummer: 202 - 100/476/84
Printed in the German Demoecratie Republie
Gesamtherstellung: VEB Druckhaus „Maxim Gorki“, 7400 Altenburg
LSV 1365
Bestellnummer: 763 243 5 (3037/40)
01400
Vorwort
Als mir Max SCHÖNWETTER 1951 die sechs Kästen mit etwa 2200 druckfertigen Manu-
skriptseiten der „Kritisch vergleichenden Beschreibung der Vogeleier‘‘ anvertraute,
ahnte ich nicht, daß mich diese erste umfassende Oologie mehr als dreißig Jahre be-
schäftigen würde. Endlich liegt nun dieser Systematische Teil A des „Handbuchs der
Oologie‘ abgeschlossen vor. Meine Freude darüber werden viele Leser teilen, die manche
Jahre vergebens auf eine Fortsetzung warten mußten, dafür aber in letzter Zeit durch
zügigeres Erscheinen der insgesamt vierzig Lieferungen (1960 bis 1984) belohnt worden
sind.
Insgesamt sind es drei schwere Bände geworden, da mit den Jahren immer mehr
neue, nach SCHÖNWETTER publizierte oder von ihm (selten) übersehene Angaben ein-
gefügt werden konnten. Überdies wurde besonders in Band III versucht, alle Quellen,
die in SCHÖNWETTERS Nachlaß bei den einzelnen Vogelformen stehen, zu zitieren, wenn
sie auch meistens nur mit Autorennamen in den mir freundlicherweise von Herrn Dr. R.
PrecHockt (Halle a. d. Saale) geliehenen Kladde angeführt sind. Der 1961 verstorbene
Verfasser des Werkes hielt dies in der Regel für überflüssig, weil es sich ja größtenteils
um eigene Messungen, Wägungen und Form-Färbungsbeschreibungen handele und die
Werke, denen er weitere Daten entnahm, wie er sagte, immer wieder dieselben seien.
Kritik an dieser Praxis aus Benutzerkreisen der ‚‚Oologie‘‘ haben mich veranlaßt, das
Manuskript entsprechend zu erweitern, was wegen großer Lücken im Nachlaß ScHöNn-
WETTERS nicht bei allen Vogelgruppen und in manchen Gruppen nicht bei allen Formen
möglich war. Immerhin wurde dadurch besonders der Band III relativ umfangreich,
wenn man die Zahl der erfaßten Arten und Unterarten berücksichtigt.
In diesem Band III sind die Eier der Passeriformes-Familien Aegithalidae bis Cor-
vidae beschrieben, in der Reihenfolge und Benennung der vier letzten Bände des Wer-
kes „Check-list of birds of the world‘, von denen Band 12 1967, Band 13 1970, Band 14
1968 und Band 15 1962 erschienen sind.
Zur Ergänzung der Angaben des Verfassers halfen mir als dem Herausgeber viele
Fachgenossen. Schwer erreichbare Literatur oder Auskünfte daraus verdanke ich den
Damen Dr. M.-Y. MorEL (RıcHARD ToLL, Senegal) und IRENE NEUFELDT (Leningrad)
sowie den Herren C. W. Benson T (Cambridge, England), Prof. Dr. A. J. BERGER
(Honolulu, USA), J. COLEBROOK-RoBJENT (Choma, Sambia), S. Eck (Dresden), Dr. E.
EISENMANN 7 (New York), Dr. T. FArkAs (Bloemfontein, Südafrika), Prof. Dr. L. von
HaArTMmAN (Helsinki), Dr. C. O. J. HArRıson (Tring, England), Dr. R. A. C. JENSEN
vI
(Windhoek, Namibia), Dr. H. LEHMANN f (Wuppertal), Dr. R. LivErsipgE (Kimberley,
Südafrika), Dr. G.F. Mees (Leiden), Dr. J. OrtTtow f (Skövde, Schweden), Dr. A.
PRIGOGINE (Brüssel), Dr. W. SERLE (Drumdak, Schottland), Prof. Dr. H. Sıck (Rio de
Janeiro), Dr. A. SKuTcH (San Isidro del General, Costa Rica), Dr. E. A. Wırrıs (Claro,
Brasilien) sowie Dr. Y. YamasHınA (Tokyo).
Zur Ergänzung des Werkes durfte ich für diesen Band in den Eiersammlungen und
(oder) Bibliotheken folgender Orte arbeiten: Adelaide (South Australian Museum),
Berlin (Zoologisches Museum im Museum für Naturkunde), Bonn (Zoologisches For-
schungsinstitut und Museum Alexander Koenig), Hamburg (Zoologisches Institut
und Zoologisches Museum), Melbourne (National Museum of Victoria), Nairobi (National
Museum of Kenya), Perth (Western Australian Museum) und Sydney (Australian
Museum), wofür ich den Verwaltern dieser Sammlungen herzlich danke, den Herren
H.C.Conpon f; Dr.G. MAUERSBERGER und Frau Dr. E. VIETINGHOFF-SCHEEL;
Dr. H. E. WoLTERS und Dr. G. RHEINWALD; Dr. H. HOERSCHELMANN; A.R. McEvey;
G. R. CUNNINGHAM-VAN SOMEREN; R. M. STORR bzw. H. J.S. DE Disney.
Wieder konnte ich, wie in den beiden ersten Bänden, briefliche Auskünfte über Eier
oder Vogelgewichte einarbeiten, für die ich den folgenden Oologen, die meistens auch
mit Literatur halfen, zu großem Dank verpflichtet bin: Dr. P. R. GrAwt (Ann Arbor,
USA), Dr. F. HAvErscHhmipTt (Ömmen, Niederlande), W. PH. J. HELLEBREKERS T
(Delft), Dr. P. Hexrıcı f (Cagliallo, Schweiz), G. Hoy (Salta, Argentinien), Dr. H.
LÖHRL (Egenhausen), W. LOoNnGMoRE (Sydney), Dr. G. H. Lowery, jr. f (Baton Rouge,
USA), Prof. Dr. J. NicoL4aı (Wilhelmshaven), Dr. R. B. Payne (Ann Arbor, USA),
Dr. H. ScHIFTER (Wien), M. P. WALTERS (Tring) und TH. WEISE (Dortmund).
Nach der großen Zahl der erhaltenen und verwerteten Eiermaße verdienen besonders
hervorgehoben zu werden M.D.pe BoURNONVILLE (Brüssel), Dr. D. L. SERVENTY
(Nedlands, West-Australien) und Mr. L. F. Kırr (Western Foundation of' Vertebrate
Zoology, Los Angeles, USA), der auch zahlreiche Schalengewichte hinzufügte.
Die Betreuer der Kreuger-Sammlung im Zoologischen Museum der Universität
Helsinki, die für das Photographieren, Messen und Wiegen der aus dem Katalog von
mir gewünschten Eier und für manche Beschreibung viel Zeit opferten, müssen auch
sehr — last not least — gelobt werden: Herr Dr. TORSTEN STJERNBERG, seit 1974
für diesen Band tätig, wurde wegen längerer Abwesenheit von Helsinki nach Abschluß
der Icteridae 1980 von Herrn FK JuHANI TERHIVUo abgelöst, und beide muß ich um
Nachsicht bitten, wenn sie mit der Wiedergabe der gut gelungenen Aufnahmen auf
den vierzehn Farbtafeln dieses Bandes nicht immer zufrieden sein können. Sie ver-
dienen meinen allerherzlichsten Dank.
Einige technische Angaben mögen folgen: Zum besseren Verständnis der Listen:
In der rechten (Verbreitungs-) Spalte wird oft der Sammler (meistens in Normalsatz)
angegeben, der meistens im Text nicht auftritt, oft aber auch die Sammlung oder der
Verfasser mit einer Angabe über die Gelegestärke, wobei manchmal eine Durchschnitts-
zahl der Eier im vollständigen Gelege steht, etwa c/1,7. — Die am Anfang der Listen-
zeile stehende Ziffer bedeutet die Zahl der gemessenen Eier, die meistens größer ist
als die Zahl der gewogenen. — In den 6 Mittelspalten sind angeführt: A (Eilängen-
durchschnitt), B (Eibreitendurchschnitt), g (Schalengewichts-Durchschnitt), d (Scha-
lendicken-Durchschnitt), G (Frischvollgewichts-Durchschnitt) und Rg (Durchschnitt
des Relativen Schalengewichtes g: G). — In der linken Spalte werden die Quellen unter-
schiedlich gekennzeichnet. Soweit sie aus der Literatur stammen, ist der Autorenname
in Kapitälchen gesetzt, soweit es sich um Sammlungen handelt, in denen der Verfasser
die Daten aufnahm, wie Nehrkorn, Britisches Museum [natürlich Br. M. (Natural
History)] oder Schönwetter, meistens mit normalen Lettern. — Für die Klärung bzw.
Berichtigung abweichender oder falscher lateinischer Vogelnamen ist oft das Register
benutzt worden.
Au
Wieder schließe ich mit der Bitte, mir Berichtigungen und Ergänzungen zu den
erschienenen Bänden mitzuteilen, damit sie in den letzten Nachträgen berücksichtigt
werden können. Umfangreiche Nachträge zu Band I und ein Gesamtverzeichnis der
zitierten Literatur werden in Band IV nach dem Mathematischen Teil B erscheinen.
Hamburg, im Dezember 1983 Wilhelm Meise
b MM
- Fi ser EL 2 fl ku A
j wer,
ad N { Yu ” 2 J ”
IR OR NEE Zu
ur, ‚IMEREEE LE 4
F .#
ji 3 ur
j a er I F
2 ! ie !
%
Inhaltsverzeichnis des Bandes III
Erscheinungsdaten der Lieferungen
Vorwort
heliss e TE.
Abbildungsverzeichnis
A. Systematischer Teil
Kritisch vergleichende Beschreibung der Vogeleier . . .
29. Ordnung Passeriformes (Fortsetzung und Ende)
Familie Aegithalidae, Schwanzmeisen uk
Familie Remizidae, Beutelmeisen
Familie Paridae, Meisen
Familie Sittidae, Kleiber
Familien Certhidae, Baumläufer, nd Ooneendee, Bauminatse her
Familie Dicaeidae, Mistelfresser
EemiliesNeetarinıidae, Nektarvögel ©. . 2... 2. 222.20.
Familie Zosteropidae, Brillenvögel .
Familie Meliphagidae, Honigfresser RE
Familie Emberizidae, Ammern und Kordkinile ? :
Familie Thraupidae, Tangaren, Pitpits und Schw bene
Familie Parulidae, Waldsänger einschließlich Bananaquits
Familie Drepanididae, Kleidervögel
Familie Vireonidae, Vireos oder Laubwürger
Familie Icteridae, Stärlinge .
Familie Fringillidae, Finken.. . .
Familie Estrildidae, Prachtfinken
Familie Ploceidae, Webervögel
Familie Sturnidae, Webervögel
Familie Oriolidae, Pirole
Familie Dicruridae, Drongos R
Familie Callaeidae, Neuseeland- Lernens
Familie Grallinidae, Australien-Schlammnestkrähen
Familie Artamidae, Schwalbenstare Ä
Familie hsenaian. Flötenwürger und rahen
Familie Ptilonorhynchidae, Laubenvögel
Familie Paradisaeidae, Paradiesvögel . .
Familie Corvidae, he :
Nachträge zu Band Ill ‚Handbuch de Oologie
645 u.
Liste derin Band III nicht erwähnten Arten von are een, Familien Kepithali-
daegBistozyıdacs a en ae a vae
Register der neben und der en V pelnamen]
Setzfehler und Berichtigungen .
ee >
Ä MENT? ;
# [> ı 4 \
fe PATE Ai
r. 12) mal
’ ) ig ha
PRREL slip hal ae
® r "ol REN
Net
Abbildungsverzeichnis
Tafel 1 (Seite 32). Eier von Angehörigen der Familien Schwanzmeisen, Beutelmeisen,
Meisen, Kleiber, Baumläufer, Baumrutscher und Mistelfresser
. Aegithalos caudatus trivirgatus
. Aegithalos concinnus talifuensis
. Auriparus flaviceps ornatus
Parus palustrvis palustris
. Parus montanus restrictus
. Parus melanolophus
. Parus ater hibernicus
. Parus cristatus weigoldi
. Parus niger niger
10. Siütta europaea asiatica
11. Sitta canadensis
12. Sıtta tephronota
13. u. 14. Neositta chrysoptera lathami
15. Certhia brachydactyla brachydaciyla
16. Certhia familiaris familiaris
17. Climacteris picumnus picumnus
18. Dicaeum agtle agıle
19. Dicaeum melanoxanthum
20. Dicaeum trigonostigma dayakanum
oo TOO PWI m
Tafel 2 (Seite 96). Eier von Angehörigen der Familien Nektarvögel,
Brillenvögel und Kuckucke
1. Anthreptes collaris garguensis
2. Anthreptes platurus metallicus?
3. Nectarinia olivacea guineensis?
4. Nectarinia senegalensis lamperti
5. Nectarinia minima
6. Nectarinia jugularis flavigaster
7. Nectarinia venusta igneiventris
8. Nectarinia habessinica altera
9. Nectarinia cuprea cuprea
0. Nectarinia tacazze jacksoni
XH
11. Nectarinia reichenowi reichenowi
12. Aethopyga gouldiae isolata
13. Chalcites maculatus
14. Aethopyga siparaja beccarii
15. Arachnothera longirostra longirostra
16. Arachnothera magna magna
17. Zosterops palpebrosa siamensts
18. Zosterops pallıida virens
Tafel 3 (Seite 160). Eier von Honigfressern
1. Lichmera indistincta ocularis
. Myzomela obscura harterti
. Myzomela sanguinolenta sanguinolenta
. M yzomela cardinalis pulcherrima
. Certhionyx niger
. Certhionyz variegatus
. Meliphaga lewiniti lewinii
. Meliphaga fusca daysoni
. Melithreptus gularıs
10. Meliphaga chrysops chrysops
11. Entomyzon cyanotis cyanotıs
12. Phrlemon citreogularıs citrogularıs
13. Philemon argenticeps kempi
14. Phylidonyris novaehollandiae longirostris
15. Ramsayornis modestus
16. Plectorhyncha lanceolata
17. Conopophila rufogulsris rufogularis
18. Xanthomyza phrygva
19. Acanthorhynchus tenuirostris dubius
20. Anthochaera rufogularis
21. Promerops cafer
22. Anthochaera carunculata woodwardt
23. Prosthemadera novaeseelandiae novaeseelandiae
SO IS OIPWMD
Tafel 4 (Seite 224). Eier von Angehörigen der Unterfamilie Ammern
in der Familie Ammern
1. Melophus lathami
2. Emberiza calandra
3. Emberiza cia africana
4. Emberiza cirlus nigrostriata
5. Emberiza tahapisi tahapisi
6. Emberiza rustica rustica
7. Emberiza aureola ornata
8. Emberiza cabanist orientalis
9. Emberiza melanocephala
0. u. 11. Emberiza schoeniclus schoeniclus
2. Emberiza schoeniclus pyrrhulina
XII
13. Calcarius lapponicus alascensis
14. Zonotrichia tliaca monoensis
15. Zonotrichia capensis costaricensvs
16. Junco hyemalis thurberi
17. Spizella passerina arizonae
Tafel 5 (Seite 304). Eier von Angehörigen der Familie Tangaren
einschließlich eines Pitpits und einer rätselhaften Art
. Cissopis leveriana leveriana
Tachyphonus surinamus surinamus
Tachyphonus rufus
Habia rubica rubra
. Piranga leucoptera leucoptera
. Ramphocelus carbo magnirostrvs
. Thraupis episcopus nesophilus oder Th. palmarum melanoptera
. Thraupis sayaca glaucocolpa
. Thraupis cyanocephala buesingi
10. Cyanicterus cyanicterus
11. Stephanophorus diadematus
12. Euphonia hirundinacea gnatho
13. Tangara mexicana vielllotti
14. Tangara arthus arthus
15. Tangara gyrola viridissima
16. Tangara cucullata cucullata
17. Chlorophanes spiza spiza
18. zu Tanagridae?
SYÄAnumumr
Tafel 7 (Seite 352). Eier von Angehörigen der Familie Waldsänger
einschließlich Bananaquits, der Familie Vireos sowie eines Stärlings
1. Mniotilta varıa
2. Parula pitiayumi elegans
3. Dendroica petechia petechia
4. Dendroica adelardae delicata
5. Seiurus aurocapillus aurocapülus
6. Protonotaria cürea
7. Geothlypis aequinoctialis aequwinoctialis
8. Wilsonia pusiulla chryseola
9. Myioborus minvatus pallidiventris
10. Bastleuterus culicivorus olivascens
10. Icteria virens auricollis
12. „‚Conirostrum bicolor bicolor“
13. Coereba flaveola barbadensts
14. O'yclarhis gujanensis flavipectus
15. Cyclarhrs gujanensis viridis
16. Vireo modestus
17. Vereo olivaceus vividior
18. Hylophilus muscicapinus muscicapinus
19. Hylophilus aurantiifroms saturatus
20. Molothrus bonariensis minimus
XIV
Tafel 9 (Seite 432). Eier von Angehörigen der Familie Stärlinge
1. Pseudoleistes guirahuro
2. Amblyramphus holosericeus
3. Gnorimopsar chopi chopi
4. Lampropsar tanagrinus guianensis
5. Quiscalus mexicanus peruvianus
6. Quiscalus niger caribaeus
7. Euphagus carolinus carolinus
8. Molothrus badius badıus
9. Molothrus rufoazıllarıs
10., 11. u. 12. Molothrus bonariensis minimus
13. Molothrus aeneus assimilis
14. Molothrus ater artemisiae
15. Scaphidura oryzivora oryzivora
16. Dolichonyx oryzivorus
Tafel 10 (Seite 496). Eier von Angehörigen der Familien Finken,
Prachtfinken und Webervögel
Fringilla coelebs gengleri
. Serinus frontalis frontalis
. Carduelis cucullata
. Carduelis barbara
. Carpodacus erythrinus erythrinus
. Pinicola enucleator enucleator
. Loxia pytyopsittacus
. Loxia curvirostra scotica
. Pyrrhula pyrrhula pyrrhula
10. Coccothraustes coccothraustes coccothraustes
11. Coccothraustes migratorius migratorius
12. Estrilda astrıld astrıld
13. u. 15. Vidua macroura
14. Amandava subflava clarkei
16. Bubalornis albirostris intermedius
17. Dinemellia dinemelli dinemelli
18. Plocepasser mahali melanorhynchus
19. Philetairus socius lepidus
20. Passer pyrrhomotus
21. u. 22. Petronia zanthocollis transfuga
23. Sporopipes squamifrons
24. Amblyospiza albifrons montana
25. Ploceus xanthopterus xzanthopterus
26. u. 27. Ploceus cucullatus graueri
28. Ploceus nigerrimus nigerrimus
29. Euplectus afer afer
30. Euplectes capensis crassirostris
SHARM wm-
Tafel 11 (Seite 608). Eier von Angehörigen der Familien Stare, Pirole und Drongos
1. Aplonis dichroa
2. Aplonis panayensis tytleri
XV
3. Onychognathus morio morio
4. Spreo hildebrandti hildebrandti?
5. Saroglossa spiloptera
6. Sturnus roseus »
7. Sturnus vulgaris tauricus (oder purpurascens)
8. Acridotheres fuscus javanicus
9. Acridotheres albocinctus
10. Buphagus erythrorhynchus caffer
11. Oriolus oriolus oriolus
12. Oriolus zanthornus xanthornus
13. Sphecotheres vielloti salvadorii
14. Dierurus ludwigvi ludwigii
15. Dierurus aeneus braunianus
16. u. 17. Dierurus paradiseus grandis
Tafel 12 (Seite 672). Eier von Angehörigen der Familien Australien-Schlammnestkrähen,
Schwalbenstare, Flötenwürger einschließlich Würgerkrähen, Laubenvögel und
Paradiesvögel
. Grallina cyanoleuca
. Corcorax melanorhamphos
. Sturnidea cinerea
. Artamus leucorhynchus humei
Artamus superciliosus
. Cracticus mentalis kempi
. Cracticus torquatus argenteus
. Gymnorhina tibicen dorsalis
. Strepera versicolor hower
10. Arluroedus crassirostris maculosus
11. Sericulus chrysocephalus chrysocephalus oder rothschildi
12. Chlamydera nuchalis orientalis oder yorki
13. Manucodia ater subalter
14. Phonygammus keraudrenii jamesti
15. Paradisaea rubra
oonoupwme
Tafel 13 (Seite 720). Eier von Angehörigen der Familie Rabenvögel
Oyanocıitta stelleri azteca
Aphelocoma coerulescens sumichrasti
Oyanocorax cyanomelas
Garrulus glandarvus fascvatus
Perisoreus infaustus infaustus
Urocissa erythrorhyncha magnvrostris
Oissa chinensis chinensis
Cyanopica cyana cooki
Oyanopica cyana cyanı
10. Dendrocitta vagabunda pallida
11. Dendrocitta frontalıs
12. Pica pica maurianica
SIT
XVI
13. Pseudopodoces humilis saxicola
14. Nucifraga caryocatactes caryocatactes
15. Pyrrhocorax pyrrhocorax pyrrhocoraz
Tafel 14 (Seite 736). Eier von Angehörigen der Familie Rabenvögel und eines Kuckucks
Corvus dauuricus
. Corvus splendens zugmeyeri
. Eudynamys scolopacea scolopacea
. Corvus enca celebensis
. Corvus capensis
Corvus nasicus
. Corvus leucognaphalus
Corvus corone cornix
. Corvus corone capellanus
10. Corvus orru cecilae
11. Corvus bennetti
12. Corvus eryptoleucus
13. Corvus corax sinuatus
soon puwuwe-
Register der wissenschaftlichen und der deutschen Vogelnamen
halbfett = Hauptbehandlung im Text
kursiv = Erwähnung in den Listen
Stern = Abbildung
Aaptus 423
— magister 422
Aaskrähe 723
abbas, Thraupis 281, 292 313
abbreviatus, Parus 7/6
abeillei, Arremon 771
abeillei, Coccothraustes 774
abeillei, Orchesticus 282, 305
aberti, Pipilo 213, 214, 215, 265
ablutum, Dieaeum 47
Abroscopus 43
— superciliaris 4
abyssinica, Zosterops 109, 110
abyssinicus, Passer 565
abyssinicus, Ploceus 538, 544, 579
Acanthagenys 144
Acanthidops bairdii 770
Acanthis 430, 435, 445, 542
— cannabina 193, 197, 199, 431, 436, 437,
444, 445, 521
— — autochthona 471
— — bella 431, 433, 441, 472
— — cannabina 433, 441, 445, 471
— — fringillirostris 472
— — harterti 445, 472
— — meadewaldoi 445, 472
— — merzbacheri 472
— — nana 471
— flammea 431, 441, 444, 445, 470
— — cabaret 433, 445, 470
— — flammea 401, 433, 445, 169
— — holboellii 445
— — islandiea 445, 469
— — rostrata 445, 469
— flavirostris 431, 441, 444
— — altaica 445, 471
— — brevirostris 445, 471
— — flavirostris 433, 437 (als C. £. f.), 445, 471
— — korejevi 433, 445, 471
— — ladacensis 471
— — leimonias 445, 471
— — miniakensis 471
— — montanella 433, 445, 471
— — pipilans 445, 470
Acanthis flavirostris ufostrigata 445, 471
— hornemanni 431, 441, 444
— — exilipes 445, 470
— — hornemanni 445, 407
— johannis 774
— yemenensis 774
Acanthiza 36, 113, 117, 140
Acanthochaera 144, 145, 163, 164
— inauris 164
Acanthogenys 144, 163
Acanthorhynchus superciliosus 116, 141, 762
— tenuirostris 116
— — cairnsensis 141, 7/67
— — dubius 141, 160*, 161, 162
— — halmaturinus 141, 161
— — tenuirostris 119, 141, 161
Accipitridae 699
acera, Euphonia 314
acik, Chaleomitra 85
acik, Nectarinia 60,61, 84
Acridotheres 591, 601
— albocinetus 592, 601, 602, 608*, 620
— cristatellus 592
— — brevipennis 602, 621
— — eristatellus 602, 621
— — formosanus 602, 621
— fuscus 592
— — einereus 602, 620
— — fuscus 592, 594, 602, 620
— — javanicus 594, 602, 608*, 620
— — mahrattensis 602, 620
— ginginianus 592, 602, 620
— grandis 592, 602, 620
— javanicus infuscatus 620
— torquatus 620
— tristis 592, 594, 602
— — melanosternus 602, 620
— — tristis 602, 619
Acrocephalus 51, 521
— arundinaceus 553, 554
— palustris 380, 534, 554
— schoenobaenus 59, 76
— seirpaceus 180, 208, 209
acrorhynchus, Oriolus 628
778
aculeata, Sitta 27, 31 aeneus, Tangavius 216, 218, 276
acuminata, Aimophila 199, 250, 765 . aequatorialis, Molothrus 370, 371, 394, 396,
acunhae, Nesospiza 202, 253 397, 427
acuticauda, Lonchura 510, 511 aequatorialis, Nectarinia 85
acuticauda, Poephila 487, 488, 490, 507 aequinoctialis, Geothlypis 331, 346, 352*, 399
acuticaudus, Lamprotornis 775 aeruginosum, Dicaeum 768
acutirostris, Geospiza 262 aestiva, Dendroica 212, 322, 325, 326. 327, 340
acutirostris, Heteralocha 645, 648 aestiva, Pyranga 309
adamsi, Montifringilla 536, 570 aestivalis, Aimophila 199, 250
adelaidae, Dendroica 326, 342, 352* aethiopica, Amblyospiza 571
adelberti, Nectarinia 768 aethiopica, Quelea 551, 585
adesma, Estrilda 496, 502 Aethiopsar 591, 602
adolphinae, Myzomela 769 Aethopyga 52, 62, 77
adsimilis, Dierurus 632, 633, 634, 639 — boltoni 768
aedon, Phragamaticola 679 — christinae 769
aedon, Troglodytes 394, 396, 763 — duyvenbodei 769
Aegintha 487 — eximia 51, 52, 75, 95
— temporalis 490 — flagrans 779
— — temporalis 505 — gouldiae 51, 52, 77
Aegithalidae 3, 5, 6, 9, 768 — — dabryii 75, 95
Aegithaliscus 4, 10 — — gouldii 95
Aegithalos 5 — — isolata 51, 75, 95, 96*
— caudatus 4, 5, 36 — ignicauda 51, 52
— — aremoricus 9 — — ignicauda 77, 97
— — caudatus 9 — mystacalis 51
— — europaeus 3, 9 — — mystacalis 77, 97
— — glaucogularis 9 — nipalensis 51 (als Actopyga)
— — irbii 9 — — nipalensis 53, 75, 95
— — italiae 9 — primigenius 768
— — kiusiuensis 9 — pulcherrima 52
— — rosaceus 9 — — pulcherrima 75, 95
— — #aiti 9 — saturata assamensis 76, 95 .
— — tephronotus 9 — — sanguinipectus 76, 95
— — trivirgatus 9, 32* — — saturata 76, 95
— — tyrrhenicus 9 — shelleyi 52
— coneinnus 4 — — bella 53, 75, 95
— — concinnus 1/0 — siparaja 51, 75, 77
— — iredalei 3, 10 — — andersoni 95
— — manipurensis 3, 10 — — beccariü 77, 96*, 97
— — rubricapillus 3, 19 — — cara 76, 97
— — talifuensis 10, 32* — — flavostriata 77, 97
— , erythrocephalus 70 — — heliogona 77, 97
— fuliginosus 768 — — labecula 76, 95
— jouschistos niveogularis 4, 10 — — magnifica 52, 53, 77, 97
— leucogenys 3, 4, 10 — — mussooriensis 95
— macronyx 12 — — seheriae 52, 53, 75, 76 (einmal errore
— macrurus 9 jugularis s.), 77, 95
— roseus 9 — — siparaja 76, 97
Aeluroedes viridis 669 — — vigorsiü 52, 53, 76, 95
aemodius, Parus 6, 7 — — viridicauda 95
aenea, Chaptia 631, 635, 636, 642 afer, Dierurus 639
aeneigularis, Nectarinia 69, 73, 93 afer, Euplectes 359, 497*, 518, 520, 522, 523,
aeneum, Dicaeum 768 551. 585, u
aeneus, Dicrurus 608*, 631, 632, 633, 635, afer, Parus 6, 7, 19
636, 642 afer, Pirlosthunun 696, 718, 750
aeneus, Molothrus 199, 265, 287, 369, 371, 397, affinis, Arachnothera 52, 78, 98
401, 408, 428 affinis, Cacicus 376, 400*, 405, 412
aeneus, Quiscalus 424 affınis, Climacteris 37, 41
affınis, Coccothraustes 774
affinis, Cyanocorax 697, 698, 705, 733
alfınis, Emberiza 770
affinis, Euphonia 279, 281, 294, 314
affinis, Habia 287, 308
affinis, Loxigilla 212, 261
affinis, Melithreptus 121, 131, 155
affınis, Oriolus 624, 627
affınis, Pardalotus 48
affinis, Parus 7/5
affınis, Phylloscopus 323, 324, 333
affınıs, Pooecetes 249
aifinis, Rhinocorax 7617
affınis, Serinus 440, 462
affinis, Sitta 29
afra, Nectarinia 53, 68, 69, 89, 90
afra, Pytilia 490, 493, 525, 528, 529
africana, Carduelis 468
africana, Emberiza 172, 224*, 226
africana, Fringilla 434, 455
aflricanus, Buphagus 591, 603, 604, 622
Aselaius 201, 214, 369—371, 377, 381, 382,
383, 387, 391, 398, 399, 412, 417, 423
— cyanopus 175, 371
— — cyanopus 383, 419
— humeralis 41/9
— icterocephalus 396
— — icterophalus 371, 419
— phoeniceus 289, 382, 383, 417, 453, 454
— — arctolegus 417
— — assıimilis 218
— — bryante 418
— — ealifornicus 383, 418
— — eaurinus 418
— — floridanus 383, 400*, 418
— — fortis 383, 417
— — Jittoralis 478
— — mailliardorum 418
— — mearnsi 418
— — megapotamus 4/8
— — neutralis 418
— — nevadensis 4/7
— — phoeniceus 371, 383, 418
— — richmondi 401
— — sonoriensis 418
— ruficapillus 175
— — frontalis 383, 119
— — ruficapillus 383, 419
— selateri 377
— thilius 175, 370, 392, 399 »
— — petersii 400*, 417
— — thilius 388, 417
— trieolor 370, 383, 419
— xanthomus 396
— — xanthomus 419
— xanthophthalmus 774
agile, Dicaeum 33*, 42, 43, 45, 768
agilis, Geothlypis 322, 332, 346
779
agilis, Parus 75
agilis, Vireosylvia 366
aglaeus, Quiscalus 425
Asriopsar 591, 616
Aidemosyne 487
— modesta 490, 509
aignani, Zosterops 107
aikeni, Junco 192, 242
Ailuroedus 663, 664
— buccoides 665
— — geislerorum 664, 665, 669
— — stoni 664, 669
— crassirostris 665
— — crassirostris 664, 665, 669
— — joanae 669
— — maculosus 663, 665, 669, 672*
— — melanocephalus 664, 665, 669
— — melanotis 665, 669
Aimophila 165, 166, 403
— aestivalis 199
— — aestivalis 250
— — bachmani 250
— botterii 199
— — botterii 250
— carpalis 401 —402
— — carpalis 199, 250
— cassinii 199, 250
— humeralis 199, 249
— — ruficauda (statt ruficauda r.) 401
— mystacalis 770
— notostieta 770
— quinquestriata septentrionalis 765
rufescens 401
— pectoralis 199, 251
— — rufescens 199, 251
ruficauda acuminata 199, 250, 765
— — lawreneii 765
— — ruficauda 401 (sub humeralis), 765
— ruficeps boucardi 199, 251
— — eremoeca 199, 250
— — ruficeps 199, 251
— — scottii 199, 251
— stolzmanni 168, 199, 250
— strigata strigata (recte strigiceps strigiceps)
250, 878
— strigiceps dabbeneni 199, 250
— — strigiceps (als strigata strigata) 250, 878
— sumichrasti 770
Alaemon 212
alani, Zosterops 703
Alario 430, 435, 441, 463
alario, Serinus 431, 441, 463
alascensis, Calearius 187, 224*, 235
alascensis, Pinicola 450, 480
Alauda 51, 185, 202, 219, 297, 382, 390, 393,
409, 521, 531, 714
— arvensis 207, 649
Alaudidae 73, 212, 279, 545, 633
|
780
alaudinus, Ammodramus 194, 244
alaudinus, Phrygilus 201, 252
alba, Motacilla 28, 51, 73, 179, 183, 204, 212,
220, 289, 290, 297, 402, 532, 534, 539, 546,
547
albata, Neositta 28, 35
albemarlei, Geospiza 262
alberti, Pteridophora 776
alberti, Ptiloris 683, 692
albertinae, Streptocitta 775
albertisi, Drepanornis 677, 684, 689, 692
albescens, Certhia £0
albicans, Troglodytes 394
albicapillus, Spreo 592, 598, 613
albiceps, Atlapetes 771
albieilius, Campylorhynchus 394
albicollis, Corvus 696— 698, 728, 762
albicollis, Pipilo 215, 265, 401
albicollis, Saltator 167, 275
albicollis, Streptocitta 775
albicollis, Zonotrichia 191, 223, 242
albifacies, Myioborus 773
albifrons, Amblyospiza 114, 497*, 523, 537,
871, 572
albifrons, Conirostrum 773
albifrons, Donacospiza 202, 253
albifrons, Epthianura 140
albifrons, Gliciphila 139 \
albifrons, Myioborus 334, 348
albifrons, Phylidonyris 138, 159
albifrons, Sitta 29
albigula, Myzomela 769
albigula, Pipilo 214, 265
albigularis, Conopophila 167
albigularis, Laterallus 386
albigularis, Sclerurus 302
albilatera, Diglossa 302, 320
albilineata, Meliphaga 769
albiloris, Oriolus 775
albinucha, Atlapetes 216, 218, 267
albinucha, Ploceus 775
albipennis, Entomyzon 119, 132, 156
albipes, Pezites 420
albirictus, Dierurus 633, 634, 640
albirostris, Archiplanus 412
albirostris, Bubalornis 496*, 522, 529,
358, 559
albirostris, Onychognathus 592—594, 596, 610
albitempora, Chlorospingus 306
albitorques, Philemon 770
albiventer, Neochmia 506
albiventer, Turdus 395
albiventris, Dacnis 772
albiventris, Nectarinia 67, 89
albiventris, Parus 19
albiventris, Zosterops 106
alboauricularis, Lichmera 115, 121, 747
albociliaris, Saltator 167, 275
albocinctus, Acridotheres 592, 601, 602, 608*,
620
albocristata, Sericossypha 771
albofrenatus, Atlapetes 217, 268
'albogularis, Conopophila 115, 117, 119, 140,
161
albogularis, Melithreptus 119, 120, 130, 131,
138, 155
albogularis, Serinus 439, 440, 461
albogularis, Sporophila 770
albogularis, Zosterops 99, 101, 102, 109
albonotata, Meliphaga 769
albonotatus, Euplectes 554, 589
albus, Corvus 697, 698, 725, 728, 759
Alcippe brunnea mandelli 146
aldabrana, Foudia 523, 585
aldabranus, Dicrurus 633, 634, 640
aldabrensis, Nectarinia 67, 88
aldabrensis, Zosterops 111
alexanderi, Amadina 516
alexis, Philemon 135, 157
alfredi, Nectarinia 57, 83
alfredi, Psarocolius 374, 377, 405, 407, 410
aliena, Rhodopechys 446, 474
alienus, Ploceus 528, 540, 574
alinae, Nectarinia 51, 58, 83
alleni, Pipilo 263
alligator, Manorina 142, 162, 163
almorae, Sitta 26, 30
alopecias, Cranioleuca 395
Alpendohle 718
Alpenkrähe 718
alpestris, Eremophila 74, 194
alpicola, Montifringilla 523, 570, 767
alpinum, Paramythium 44, 48
alpinus, Pyrrhocorax 750
altaica, Acanthis 445, 471
altaica, Leucosticte 433, 445, 472
altera, Nectarinia 70, 91, 96*
alticola, Icterus 2/4
alticola, Poospiza 770
alticola, Sturnella 386, 421
alticola, Vireo 365
alticola, Zonotrichia 239
altiloquus, Vireo 359, 362, 366, 367
amabilis, Parus 768
Amadina 487, 488
— erythrocephala 490
— — dissita 490, 516
— — erythrocephala 516
— fasciata 490, 528, 531
— — alexanderi 516
— — fasciata 516
— — meridionalis 490, 516
amandava, Amandava 487 —489, 504
Amandava 487 —489
— amandava amandava 504
— — flavidiventris 504
781
Amandava amandava punicea 488, 504 Ammodramus caudacutus nelsoni 195, 245
— formosa 487, 488, 504 ' — — subvirgatus 195, 246
— subflava 491 — dorsalis 247
— — clarkei 490, 491, 492*, 504, 527 (als — henslowii 168
Estrilda)
— — subflava 504
amantum, Rhodopechys 447, 474
Amauresthes 487, 510
amaurocephalus, Ploceus 582
amauropteryx, Vidua 523, 525, 557
Amaurornis phoenicurus 667
Amaurospiza concolor 211, 401
— — relicta 260
— henslowii 196, 246
— susurrans 196, 246
humeralis 166, 196
— dorsalis 247
— humeralis 168, 196, 247
— tucumanensis 247
— xanthornus 196, 247
leconteii 196, 246
maritimus 195
— moesta 770 — fisheri 195, 245
amazonica, Schistochlamys 283, 305 — juncicola 195, 245
ambigua, Carduelis 431, 441, 443, 465 — — macgillivraii 195, 245
Amblycercus 377, 378, 412 — — maritimus 195, 245
Amblyornis 663 — — mirabilis 195, 245
— flavifrons 776 — — nigrescens 195, 245
— inornatus 665, 670, 776 — — pelonota 195, 245
— macgregoriae 665 — — peninsulae 195, 245
— — macgregoriae 664, 665, 670 — — sennetti 195, 245
— subalaris 665, 670 — passerina (errore für Spizella p.) 166
Amblyospiza 517, 519—522, 538, 548 — peruanus (olim Pyrrhospiza peruana) 196,
— albifrons 537 247
— — aethiopica 571 — sandwichensis 195
— — albifrons 572 — — alaudinus 194, 244
— — capitalba 523, 571 — — athinus 194, 244
— — kasaica 572 — — beldingi 195, 244
— — maxima 72 — — labradorius 194, 243
— — melanota 571 — — mediogriseus 194, 294
— — montana 497, 571, 572 — — nevadensis 194, 244
— — saturata 571 — — princeps 194, 243
— — tandae 571 — — savanna 168, 194, 244
— unicolor 114, 523, 537, 571 — savannarum bimaculatus 246
Relrlamihus 370, 398 — — perpallidus 196, 246
— holosericeus 371 (als h. holos.), 386, 387, — — pratensis 196, 246
422, 432* — — savannarum 196, 246
— tucumanensis 247
Ammodromus 165, 195, 245, 246
Ammospiza 195, 245, 246
amoena, Passerina 223, 277
Amoromyza 137, 158
americana, Certhia 20
americana, Parula 322, 324, 339
americana, Spiza 168, 219, 270, 272*
americana, Sporophila 168, 207, 208, 257
americanus, Corvus 753
amethystina, Nectarinia 51, 52, 59, 60, 84 Ampeliceps 591
amethystinus, Lamprotornis 596, 611 — coronatus 592, 602, 621
Ammern 51, 66, 76, 165, 166—168, 176, 177, Amphispiza 166, 167
179, 180, 184, 201, 224*, 272*, 278, 279, — belli belli 199, 249
321, 337, 359, 387, 434, 439, 521, 524 — — canescens 199, 249
Ammern, Eigentliche 165 — — nevadensis 199, 249
ammodendri, Passer 520, 523, 531, 561 — bilineata 401
Ammodramus 165, 166, 191, 197, 403 — — bilineata 198, 249
— aurifrons 166, 196 — — deserticola 198, 249
— — aurifrons 197, 247 amplus, Carpodacus 448, 477
— baileyi 770 Amsel 197, 279, 288, 383, 384, 454, 598, 599,
— bairdii 196, 246 716
— bimaculatus 246 amurensis, Sitta 29
— caudacutus 196 amydrus, Artamus 650, 652
— — caudacutus 195, 246 Amydrus 591, 595, 609
182
Anabathmis 58, 83
Anaimos 43, 45
anais, Mino 775
analis, Catamenia 211, 260
analis, Iridosornis 772
analoga, Meliphaga 115, 118, 119, 123, 150
Anaplectes 517, 550, 584
— melanotis 550
Anatidae 168, 664
anatoliae, Parus 14, 763
anchietae, Anthreptes 51, 54, 80
andamanensis, Corvus 724, 757
andamanensis, Dicrurus 632, 637, 644
andamanensis, Gracula 603, 622
andamanensis, Oriolus 625, 628
andamanensis, Sturnus 600 .615
andamanica, Nectarinia 64, 86
andersoni, Aethopyga 95
anderssoni, Pica 715, 746
anderssoni, Zosterops 99, 100, 110
Anellobia 144
— mellivora 163
angelae, Dendroica 773
angelorum, Ploceus 582
angladiana, Nectarinia 94
angolensis, Anthreptes 55, 81
angolensis, Cinnyris 84
angolensis, Nectarinia 59
angolensis, Oryzoborus 168, 210, 260
angolensis, Ploceus 520, 548, 583, 775
angolensis, Uraeginthus 487, 489, 490, 491,
500, 525
angusta, Neocichla 598, 613
angustifrons, Psarocolius 370, 373, 374, 410
angustipluma, Chaetoptila 770
Anisognathus flavinuchus 279 (als Compso-
coma flavinucha)
— — venezuelanus 281 (als venezuelensis),
293, 314
— igniventris 280 (als Poecilothraupis i.)
— — lunulatus 293, 314
— lacrymosus 772
— notabilis 772
anjuanensis, Foudia 551, 585
anjuanensis, Zosterops 112
ankoberensis, Serinus 774
anna, Ciridops 773
annae, Dicaeum 768
anneae, Euphonia 772
annectans, Dierurus 631—634, 635, 636, 642
annectens, Cyanocitta 701, 729
annexus, Parus 17
annulosa, Poephila 506
annulosa, Zosterops 111
annumbi, Anumbius 390, 392
anomala, Zosterops 769
Anomalospiza 517, 520, 533
— imberbis 523, 533, 555, 590
anomalus, Euplectes 520, 551, 552, 585
anoxanthus, Loxipasser 212, 261
ansorgei, Diatropura 518, 590
ansorgei, Euplectes 552, 586
ansorgei, Nesocharis 490, 491, 492
ansorgei, Plocepasser 559
Anthobaphes 91
Änthochaera 113, 115, 118
— carunculata 116, 119, 131, 134, 136, 144,
145
— — carunculata 145, 164
— — woodwardi 145, 160*, 164
— chrysoptera 116
— — chrysoptera 119, 144, 163
— — lunulata 119, 145, 164
— — tasmanica 144, 164
— paradoxa 116, 118, 131, 145, 164
— rufogularis 116, 119, 120, 144, 160*, 163
anthonyi, Dicaeum 768
Anthornis melanura 115, 116
— — dumerilii 143, 163
— — melanocephala 144, 163
— — melanura 143, 163
Anthoscopus 3, 5, 11
— caroli 5
— — caroli 5, 12
— — hellmayri 12
— — robertsi 12
— — roccatii 763
— flavifrons 768
— minutus damarensis 12
— — minutus 5, 13
— musculus /2
— parvulus senegalensis 12
— punctifrons 768
— sylviella 12
Anthothreptes 50
— collaris 81
— hypodila 55
Anthreptes 50, 52
— anchietae 51, 54, 80
— aurantium 51, 52, 55, 81
— collaris 50—53, 56, 57
— — beverleyae 56, 82
— — capensis (errore für collaris) 82, 878
— — collaris 56, 82 (auch als capensis), 878
— — elachior 55, 81
— — garguensis 55, 81, 96*
— — hypodilus 55, 81
— — jubaensis 51, 55, 81
— — patersonae 56, 82
— — somereni 53, 55, 81
— — subeollaris 55, 81
— — ugandae 81
— — zambesianus 56 (einmal als zambesiana),
81
— — zuluensis 56, 82
— fraseri 768
Anthreptes gabonicus 52, 53, 80
— longuemarei 52, 58, 81
— — angolensis 55, 81
— — nyassae 39, 81
— malacensis 51, 52, 54, 146
— — celebensis 54, 80
— — malacensis 54, 80
— meeki 147
— neglectus 768
— nuchalis nuchalis 82
— orientalis 51, 52
— — orientalis 55, 81
— pallidigaster 768
— platurus 51, 52, 96*
— — metallieus 52, 56, 82, 96*
— — platurus 56, 82
— rectirostris rectirostris 35, 81
— reichenowi 51
— — reichenowi 54, 80
— rhodolaema 80
— seimundi minor 82
— simplex 54, 80
— singalensis 51, 52
— — internotus 54, 80
— — phoenicotis 50, 35, 63, 80
— — rubinigentis 51, 54, 80
— — sumatranus 54, 80
— xanthochlorus 80
Anthrothreptes 81
Anthus 51, 59, 169, 170, 178, 181, 279, 291,
292, 390, 398, 521
— novaeseelandiae richardi 202
— pratensis 56, 68, 298, 533, 534, 547
— trivialıs 59, 74, 170, 179, 188, 291, 342
antofagastae, Zonotrichia 191, 240
Anumbius 392, 398
— annumbi 392, 399
Apalopteron 123, 137
— familiare 116
— — hahasima 130, 154
aphanes, Cacicus 412
Aphelocephala 3
Aphelocoma 695, 731
— coerulescens 696, 697, 701
— — californica 701, 702, 730
— — caurina 701, 730
— — coerulescens 702, 731
— — cyanea 731
— — eyanotis 702, 731
-—Z— Ziondanani3l
— — hypoleuca 702, 730
— — insularis 702, 730
— — nevadae 702, 731
— — obscura 701, 730
— — oocleptica 701, 730
— — sumichrasti 702, 720*, 731
— — superciliosus 730
— — texana 702, 731
183
Aphelocoma coerulescens woodhouseii 702, 731
— ultramarina arizonae 696, 702, 731
— — couchii 696, 702, 731
— unicolor 696, 776
— — unicolor 696, 703, 731
Aphobus 423
— chopi 423
aphrodite, Parus 20
apicalis, Moho 770
apivorus, Dierurus 634
Aplonis 450, 591, 592, 593, 595
— atrifusca 137, 594, 606
— brunneicapilla 592, 595, 609
— cantoroides 594, 607
— cinerascens 775
— corvina 775
— crassa 775
— dichroa 594, 607, 608*
— feadensis 593
— — feadensis 607
— fusca fusca 594, 606
— — hulliana 606
— grandis dichroa 607
— — malaitae 595, 607
— ıinsularis 775
— magna 775
— mavornata 775
— metallica 592, 603
— metallica 594, 595, 609
— — nitida 395, 609
— — purpureiceps 595, 609
— minor minor 595, 607
— mysolensis 775
— mystacea 775
— opaca 595
— — kurodai 594, 595, 606
— — ponapensis 594, 606
— panayensis panayensis 592, 594, 609
— — strigata 595, 607
— — tytleri 592, 595, 607, 608*
— pelzelni 775
— santovestris 775
— striata 775
— tabuensis brevirostris 592, 594. 606
— — vitiensis 594, 606
— zelandica 775
aplonotus, Parus 22
apoda, Paradisaea 677, 682, 686, 687, 688, 693
Apoia 109
apolis, Nectarinia 66, 88
approximans, Euplectes 553, 588
apurensis, Emberizoides 256
arabica, Emberiza 177, 229
arabs, Zosterops 7/10
Arachnechthra 88
Arachnoraphis 98
Arachnothera 52
— affinis 52
734
Arachnothera affinis affinis 78, 98
— — pars 78, 98
— chrysogenys harrissoni 98, A
— clarae 769
— crassirostris 769
— everetti 52, 79, 98
— flavigaster 769
— juliae 769
— longirostra 52, 53, 117
— — buettikoferi 78, 97
— — longirostra 53, 77, 96*, 97
— — prillwitzi 51, 78, 97
— magna 50, 52, 53
— — aurata 79, 98
— — magna 53, 78, 96*, 98
— modesta 98
— robusta 52
— — armata 78, 98
— — robusta 78, 98
Arachnotherinae 52
arborea, Lullula 402
arborea, Spizella 168, 197, 247
arboreus, Passer 562
arcaei, Buthraupis 772
Archboldia 663, 664
— papuensis 776
Archiplanus 377, 412
— albirostris 212
arcticus, Pipilo 214, 264
arctoa, Leucosticte 431, 445, 446, 472, 473
arctoa, Montifringilla 472
arctolegus, Agelaius 417
arcuata, Emberiza 168, 179, 230
ardens, Euplectes 519, 520, 523, 526, 542, 553,
554, 555, 589, 590
ardeola, Dromas 117
ardesiaca, Sporophila 770
aremoricus, Aegithalos 9
arenacea, Spizella 197, 248
arfaki, Oreocharis 768
arfakiana, Melanocharis 768
argentauris, Lichmera 769
argenteus, Cracticus 695, 659, 672*
argenticeps, Philemon 116, 119, 135, 157, 160*
argentigula, Cyanolyca 776
argentina, Passerina 168, 222, 223, 276
argentina, Zonotrichia 190, 240
argentinae, Basileuterus 348
arguta, Chlorophanes 300, 319
arguta, Strepera 658, 662
argutula, Sturnella 385, 400*, 421
argyrofenges, Tangara 772
argyrophrys, Carpodacus 478
arizela, Geothlypis 331, 345 (als arizelae)
arizonae, Aphelocoma 696, 702, 731
arizonae, Carduelis 467
arizonae, Peucedramus 335, 350
arizonae, Spizella 197, 224*, 247
arizonae, Vireo 364
armata, Arachnothera 78, 98
arnaudi, Pseudonigrita 516, 519, 520, 531, 560
Arremon 166, 167, 278, 306
— abeillei 771
— aurantiirostris aurantiirostris 216, 266
— — rufidorsalis 216, 266
— — spectabilis 216, 266
— flavirostris dorbignii 266
— — polionotus 216, 266
— schlegeli 771
— silens 266
— taeiturnus semitorquatus 216, 266
— — taciturnus 167, 215, 266, 272*
arremonops, Oreothraupis 771
Arremonops 166, 216
— chloronotus 223
— — chloronotus 267
— conirostris chrysoma 267
— — conirostris 267
— — richmondi 167, 267
— — striaticeps 167, 267, 394
— — venezuelensis 267
— rufivirgatus crassirostris 266
— — rufivirgatus 266
—. — superciliosus 267
— tocuyensis 771
Artamidae 649, 776
Artamus 649
— cinereus cinereus 653
— — hypoleucus 649, 651, 653
— — melanops 649, 650, 651, 653
— cyanopterus 116, 123
— — ceyanopterus 649, 651, 653
— — perthi 651, 653
— fuscus 649, 650, 651, 652
— insignis 776
— leucogaster 652 .
— leucorhynchus amydrus 650, 652
— — humei 650, 652, 672*
— — leucogaster 652
— — leucopygialis 649, 650, 652
— — leucorhynchus 649, 652
— — melaleucus 650, 652
— — mentalis 650, 652
— maximus 776
— minor 649, 651, 653
— monachus 776
— personatus 649, 650, 653
— sordidus 653
— superciliosus 649, 650,653, 672*
artatus, Parus 21
artemisiae, Molothrus 401, 428, 432*
arthus, Tangara 279, 281, 297, 304*, 317
arturi, Nectarinia 51, 74, 94
aruensis, Meliphaga 115, 118, 119, 123, 124,
150
aruensis, Philemon 133, 156
aruensis, Zosterops 106
arundinaceus, Acrocephalus 553, 554
arundinaceus, Ploceus 578
Arundinicola leucocephala 396 2
arvensis, Alauda 207, 649
arvensis, Sycalis 255
ashantiensis, Nectarinia 74, 94, 96*
ashbyi, Strepera 658, 661
asiatica, Nectarinia 51, 55, 61 (ohne Gattung),
62, 64, 66, 67, 76, 88
asiatica, Sitta 26, 29, 32*
Asio flammeus 765
aspasia, Hermotimia 86
aspasioides, Nectarinia 63, 86
assamensis, Aethopyga 76, 95
assamicus, Sturnus 399, 615
assimilis, Agelaius £18
assimilis, Dendrocitta 743
assimilis, Megaloprepia 666
assimilis, Molothrus 287, 401, 428
assimilis, Pardalotus 48
assimilis, Poospiza 254
assimilis, Quiscalus 424
Asthenes baeri 392, 399
Astragalinus 430, 441, 444, 66, 467
Astrapia 676, 678, 683
— mayeri 673, 684, 692
— nigra 776
— rothschildi 677, 685, 693
— splendidissima 776
— stephaniae 693
— — ducalis 684, 693
— — stephaniae 585, 687, 693
astrild, Estrilda 487—491, 492*, 502, 503,
525 —527
Astrilde 441
asymmetrurus, Euplectes 554, 589
atactus, Dierurus 634, 639
Ateleodacnis 351
ater, Manucodia 672*, 677, 679, 680, 682, 690
ater, Melipotes 770
ater, Molothrus 352*, 363, 370, 371, 394, 398,
401, 402, Fe 404, 408, 428, 429, 766
ater, Parus 6, 7, 17, 18, 32*
aterrima, ie 333
aterrimus, Notiopsar 422
aterrimus, Platysmurus 697, 700, 729
athinus, Ammodramus 194, 244
atkinsi, Sitta 27, 31
atlantica, Zonotrichia 237
Atlapetes 165— 167, 216— 218, 278, 537
— albiceps 771
— albinucha 216—218
— — brunnescens 216, 267
— — griseopectus 216, 267
— — gutturalis 216, 267
— — parvirostris 216, 267
— albofrenatus meridae 217, 268
50 Oologie, 40. Lieferung
Atlapetes brunneinucha 217, 218, 268
— — elsae 217, 218, 268
— — frontalis 217, 218, 268
— — macrourus 217, 268
— — suttoni 217, 268
— citrinellus 217, 218, 268
— flaviceps 771
— fulviceps 771
— fuscoolivaceus 771
— leucopis 771
— leucopterus 771
— melanocephalus 771
— nationi 771
— pallidiceps 771
— pallidinucha 771
— personatus 771
— pileatus pileatus 217, 267, 268
— rufigenis 771
— rufinucha 217
— — elaeoprorus 217, 267
— — latinuchus 217, 267
— — rufinucha 217, 267
— schistaceus 217
— — castaneifrons 217, 268
— semirufus 771
— torquatus 217, 218
— — costaricensis 218, 268
— — virenticeps 218, 268
— tricolor 771
atmorei, Zosterops Z/11
atra, Buchanga 635, 640
atra, Manucodia 724
atra, Schistochlamys 305
atrata, Carduelis 431, 444, 466
atrata, Coereba 353
atrata, Leucosticte 446, 473
atratus, Parus 1/6
atricapilla, Calospiza 319
atricapilla, Estrilda 503
atricapilla, Lonchura 513
atricapilla, Sylvia 61, 62, 65, 77, 140, 146,
179, 180, 183, 194, 302
atricapilla, Zonotrichia 191, 242
atricapilla, Zosterops 769
atricapilloides, Parus 15
atricapillus, Garrulus 737
atricapillus, Melithreptus 755
atricapillus, Parus 75
atricapilius, Vireo 360, 363
atriceps, Carduelis 774
atriceps, Phrygilus 200, 251
atriceps, Saltator 273
atriceps, Zosterops 769
atricollis, Ortygospiza 505
atricollis, Saltator 275
atricristatus, Parus 24
atrifrons, Zosterops 99, 100, 106
atrifusca, Aplonis 137, 594, 606
786
atrigula, Ploceus 548, 582
atrimaxillaris, Habia 772
atripennis, Dierurus 632, 633, 634, 639
atripennis, Saltator 273
atrocaeruleus, Dierurus 632, 633, 636, 642
atrocastaneus, Ostinops 410
atrogularis, Serinus 430, 431, 433, 435, 437,
438, 458, 459, 774
atrogularis, Spizella 166, 198, 248, 294 (als atri-
gularis), 401
atronitens, Molothrus 395, 396, 427
atropileus, Chlorospingus (s. Hemispingus) 279
atropileus, Hemispingus 279 (als Chloro-
spingus), 284, 306
atropygialis, Poephila 490, 507
atrosericeus, Ramphocelus 311
atroviolacea, Dives 370 (als altroviolaceus),
338, 423
atrovirens, Psarocolius 370. 373, 375, 408,
410
aubryana, Gymnomyza 770
auduboni, Dendroica 328, 343
auduboni, Icterus 381, 401, #16
augustaevictoriae, Paradisaea 677, 683, 687,
688, 694
augustus, Melithreptus 130, 154
auranteoventris, Pheucticus 167, 220, 270
aurantiaca, Pyrrhula 431, 435, 451, 482
aurantiacus, Myioborus 334, 348
aurantiicollis, Euphonia 294, 295, 296, 315
aurantiifrons, Hylophilus 352*, 362, 367
aurantirostris, Arremon 216, 266
aurantiirostris, Catharus 401
aurantirostris, Saltator 167, 275
aurantiiventris, Carduelis 442, 463
aurantium, Anthreptes 51, 52, 55, 81
aurantius, Lanio 307 (als aurantium), 771
aurantius, Ploceus 541, 575
aurata, Arachnothera 79, 98
aurata, Saroglossa 592, 599, 614
auratus, Icterus 379, 414
auratus, Oriolus 623, 624, 625, 628
aurea, Nectarinia 59, 84, 96*
aureata, Euphonia 295, 316
aureiventris, Pseudochloris 204
aureiventris, Zosterops 104
aureocineta, Buthraupis 772
aureodorsalis, Buthraupis 772
aureoflavus, Ploceus 523 (als a. pallidus), 540,
375
aureola, Dendroica 325, 341
aureola, Emberiza 166, 168, 180, 181, 182,
183, 187, 209, 224*, 231
aureolimbatus, Dicaeum 42, 44, 45
aureonucha, Ploceus 775
aureus, Euplectes 775
aureus, Sericulus 776
auricapillus, Icterus £/4
auricapillus, Ploceus 578
auriceps, Nectarinia 51, 52, 62, 63, 66, 85
auricollis, Icteria 336, 351, 352*
auricomis, Ptilotis 153
auricrissa, Thraupis 279, 292, 313
auricularis, Hemispingus 284, 306
aurifrons, Ammodramus 166, 196, 197, 247
Auriparus 3, 5, 6
— flaviceps 5
— — flaviceps 13
— Yorastus1 3,92%
Auripasser 517 (als Auropasser), 534, 568
auripennis, Seleucidis 677, 683, 692
aurita, Sporophila 208, 257
auriventer, Zosterops 99, 104
auriventris, Siealis 204, 255
aurocapillus, Seiurus 322 (als aurocapilla), 329,
330, 335, 344, 352*, 403, 404
Auropasser (errore für Auripasser) 517
auropectoralis, Sturnella 386, 421
aurora, Nectarinia 65, 87
australasiana, Meliornis /58
australe, Dicaeum 42, 44, 46
Australien-Schlammnestkrähen 646, 672*
australis, Corvus 758
australis, Cryptospiza 490, 494
australis, Lamprotornis 592, 597, 612
australis, Leucosticte 446, 473
australis, Ostinops 410
australis, Psarocolius 374
australis, Tehagra 636
australis, Zonotrichia 190, 240
Australkleiber 25
autochthona, Acanthis 471, 472
axillaris, Euplectes 519, 520, 552, 553, 554,
388
azarae, Basileuterus 335, 349
azarae, Saltator 274
azteca, Cyanocitta 701, 720*, 730
Azurblaurabe 704 j
azurea, Calocitta 696, 707, 735
azurea, Sitta 27, 34
bachmani, ‘Aimophila 250
bachmanii, Vermivora 322, 338
Bachstelze 28, 51, 183, 204, 297
bactriana, Pica 698, 715, 745
bactrianus, Passer 523, 562
badius, Molothrus 370, 371, 386, 390, 391, 392,
393, 398, 409, 426, 432*, 703, 766, 767
badius, Ploceus 517, 519—521, 546, 580
Baeolophus 6, 24
baeri, Asthenes 392, 399
baeri, Paroaria 771
baeri, Poospiza 770
baglafecht, Ploceus 520, 523, 537, 538, 572, 573
Baglafechtweber 517
bahamensis, Coereba 322, 351
baicalensis, Parus 6, 75
baicalensis, Sitta 29
baileyae, Parus 1/6
baileyi, Ammodramus 770
baileyi, Dendrocitta 697, 714, 744
baileyi, Pyrrhocorax 718, 749
bailleui, Loxioides 356, 358
bailundensis, Lamprotornis 597, 612
bairdi, Geothlypis 331, 345
bairdi, Junco 192, 193, 243
bairdi, Vireo 773
bairdii, Acanthidops 770
bairdii, Ammodramus 196, 246
bakeri, Sericulus 776
baleanica, Carduelis 468
balearica, Fringilla 435, 455:
balearica, Loxia 451, 481
balearoibericus, Passer 567
balfouri, Nectarinia 768
balicassius, Dierurus 775
ballmanni, Malimbus 775
balstoni, Zosterops 101, 107
baltimore, Icterus 415
bambergi, Garrulus 738
Bananaquits 321, 352*
bananivora, Coereba 353
bangsi, Tangara 280 (als gyruloides), 281, 296,
298, 318, 878
bannermani, Nectarinia 768
bannermani, Ploceus 774
barabensis, Remiz 7/1
barbadensis, Coereba 352*, 353
barbadensis, Loxigilla 212, 262
barbadensis, Vireo 359, 362, 367
barbara, Petronia 536, 569
barbarus, Pyrrhocorax 718, 749
barbata, Carduelis 431, 441, 443, 444, 466, 496*
barbatulus, Vireo 366
barbatus, Serinus 438, 459
baritula, Diglossa 282 (als D. plumbea), 302,
320
barlowi, Parus 1/7
barroni, Pardalotus 49
bartholemica, Coereba 337, 353
bartletti, Malimbus 549
Bartstrichweber 517
basalis, Chaleites 117
basilanica, Zosterops 105
Basileuterus 278, 334, 335, 350
— basilieus 773
— belli elarus 335, 349
— bivittatus argentinae 348
— — bivittatus 334, 348
— chrysogaster 773
— einereicollis 773
— conspicillatus 773
— coronatus regulus 349
— ceulicivorus 349
50*
7187
Basileuterus culicivorus auricapillus 335, 349
— — azarae 335, 3419
— — eulicivorus 322, 335, 349
— — godmani 335, 349
— — olivascens 335, 349, 352*
— flaveolus 334, 348
— fraseri 773
— griseiceps 773
— hypoleucus 773
— leucoblepharus 335, 350
— leucophrys 773
— luteoviridis 773
— melanogenys melanogenys 335, 349
— nigrocristatus 334, 349
— rufifrons 401
— — delattrii 335, 319
— — dugesi 335, 349
— — mesochrysus 335, 349
— signatus 773
— stragulatus 350
— trifaseiatus 773
— tristriatus meridanus 335, 350
vermivorus 349
— tristriatus 335, 350
Basilornis celebensis 775
— corythaix 775
— galeatus 775
— miranda 775
basutoensis, Emberiza 178, 229
batanis, Zosterops 103
batesi, Melidectes 136, 158
batesi, Nectarinia 52, 56, 82
batesi, Ploceus 774
Bathilda 487, 506
Baumläufer 25, 32*, 36
Baumpieper 74, 186
Baumrutscher 32*, 36
baya, Ploceus 582
beavani, Parus 6, 7, 17
beccarii, Aethopyga 77, 96*, 97
beecheii, Cissilopha 696, 697, 703, 732
beicki, Carpodacus 449, 478
beldingi, Ammodramus 195, 244
beldingi, Geothlypis 331, 345
belfordi, Melidectes 770
bella, Acanthis 431, 433, 441, 472
bella, Aethopyga 53, 75, 95
bella, Emblema 487, 490, 305
belli, Amphispiza 199, 249
belli, Basileuterus 335, 349
belli, Pytilia 487, 493
bellicosa, Pezites 384, 220
bellii, Vireo 360, 364, 404
bendirei, Loxia 482
bendirei, Toxostoma 401
bengalus, Uraeginthus 490, 500
benghalensis, Ploceus 519, 523, 548, 581
benguellensis, Estrilda 489, 502
1788
bocagei, Euplectes 553, 588
bennetti, Corvus 696, 698, 725, 736*, 758 bocagii, Nectarinia 51, 71, 92
benti, Loxia 451, 482 boehmi, Dinemellia 529, 559
Beos 591 bogotensis, Tangara 280 u. 296 (errore chry-
Berghänfling 445 sophrys), 298, 318, 878
berlepschi, Dacnis 773 bohndorffi, Nectarinia 58, 83
berlepschi, Thraupis 291, 312 bohndorffi, Ploceus 523, 544, 579
bermudianus, Vireo 364 bojeri, Ploceus 518—521, 541, 551, 576
bernardi, Sakesphorus 394 bokharensis, Parus 6, 7, 22
bertrandi, Ploceus 520, 538, 573 boliviana, Hemithraupis 284, 306
Beutelmeisen 3, 5, 32* boliviana, Poospiza 770
beverleyae, Anthreptes 56, 82 boliviana, Tangara 296, 297, 299, 317
Bhringa 114, 631, 632, 636, 642 boliviana (als sayaca obscura), Thraupis 280
bianchii, Certhia 39 bolivianus, Oreopsar 388, 423
biarcuatum, Melozone 215, 266 boltoni, Aethopyga 768
biarmicus, Panurus 376 Bombyeilla 453, 454
biblieus, Passer 532, 562 — cedrorum 402
bichenovii, Poephila 487, 488, 490, 506 — garrulus 174, 175
bicolor, Calamospiza 236 bonana, Icterus 381, 396, 416
bicolor, Conirostrum 301, 322, 336, 351, bonariensis, Molothrus 219, 221, 270, 286, 309,
352*, 396 310, 352*, 362, 366, 367, 369, 370, 376,
bicolor, Dicaeum 768 377, 384-386, 388, 390 — 395, 396, 398, 401,
benguellensis, Passer 565
bicolor, Lonchura 490, 510, 767
bicolor, Nigrita 490, 492
bicolor, Parus 6, 24
bicolor, Ploceus 519—521, 548, 583
bicolor, Speculipastor 592, 598, 613
bicolor, Spreo 592—594, 596, 598, 613
bicolor, Tiaris 168, 211, 261, 272*
biddulphi, Podoces 697, 716, 747
bidentata, Piranga 309
bidentata, Pyranga 309
bifasciata, Loxia 451, 482
bifasciata, Nectarinia 51 —53, 72, 92, 93
bifasciatus, Psarocolius 774
bilineata, Amphispiza 198, 249, 401
bimaculatus, Ammodramus 246
bimaensis, Dicrurus 637, 643
bipartitus, Phrygilus 201, 252
bishopi, Catharopeza 773
bishopi, Moho 770
bispecularis, Garrulus 698, 708, 768
bispecularis, Lamprotornis 611
bivittatus, Basileuterus 334, 348
blackburniae, Dendroica 343
blanfordi, Montifringilla 774
blasii, Myzomela 115, 116, 118, 121, 148
Blaubrustparadieselster 685
Blaukehlchen 542
Blaunackenstrahlenparadiesvogel 686
Blauparadiesvogel 688
Blauraben 704
Bleda 667
bloodi, Epimachus 677, 684, 692
Bluthänfling 193, 197, 437, 444
blythi, Carpodacus 449, 478
blythii, Onychognathus 591, 592, 595, 596, 610
blythii, Sturnus 599, 6175
402, 408, 428, 767
bonariensis, Thraupis 201, 280, 292, 293, 314
bonelli, Phylloscopus 177
borbonica, Zosterops I111
borealis, Parus 7/4
borin, Sylvia 179, 297, 302, 393
borneanum, Dicaeum 47
borneensis, Dierurus 632, 633, 637, 643
bottanensis, Pica 715, 746
botterii, Aimophila 199, 250
boucardi, Aimophila 199, 251
boucardi, Granatellus 336, 351
bougainvillei, Melilestes 769
bouroensis, Oriolus 775
bouvieri, Nectarinia 768
bouvreuil, Sporophila 259
bouvronides, Sporophila 207, 257, 258, 272*
bowensis, Pardalotus 49
braba (als braha), Phylidonyris 138
braccatus, Moho 770
brachidactyla, Geothlypis 345
Brachycope 517, 551
brachydactyla, Calandrella 212
brachydactyla, Certhia 7, 32*, 36, 40
brachydactyla, Petronia 519, 520, 535, 568
brachypterus, Ploceus 523, 539, 574
brachypterus, Quiscalus 371, 225
brachypus, Pyrrhocorax 698, 718, 750
brachyrhynchos, Corvus 697, 698, 722, 723,
753, 754
brachyrhynchus, Oriolus 775
Brachyspiza 165, 166, 190, 240
— canicapilla 240
— peruviana 240
— pileata 240
brachyurus, Idiopsar 770
bracteatus, Dierurus 632, 636, 637, 643
bractiatus, Cinnyris 89
braha (für braba), Phylidonyris 138
brandti, Garrulus 738
brandti, Leucosticte 433, 445, 472
brasiliensis, Tangara 279, 297, 317
brassi, Philemon 769
Braunbrustammern 182
Braunhäher 707
braunianus, Dierurus 608*, 633, 636, 642
Braunkehlchen 5
bres, Criniger 77
bresilius, Ramphocelus 311, 399
brevicauda, Muscigralla 394
brevicauda, Paradigalla 684, 692
brevicaudus, Coryphospingus 219, 269
brevipennis, Acridotheres 602, 621
brevipennis, Vireo 360, 363, 402
brevirostris, Acanthis 445, 471
brevirostris, Aplonis 594, 606
brevirostris, Dierurus 632, 633, 637, 673
brevirostris, Melithreptus 119, 130, 131, 154
brevirostris, Molothrus 427, 428
brevirostris, Nectarinia 66, 88
brevirostris, Parus 74
brevirostris, Petronia 523, 536, 569
breviunguis, Dendroica 326, 341, 344
breweri, Quiscalus 426
breweri, Spizella 198, 248
brewsteri, Dendroica 340
brewsteri, Saltator 167, 274
Brillenparadiesvogel 678
Brillenvögel 96*, 99, 100
brissonii, Passerina 166, 168, 222, 223, 276
bristoli, Dendrocitta 698, 712, 742
britannica, Carduelis 468
britannica, Sitta 29
britannicus, Parus 7, 18
brittanica, Certhia 39
bromia, Cyanocitta 698, 700, 729
broomei, Ramsayornis 139, 159
browni, Sicalis 208, 255
bruante, Foudia 775
bruijni, Grallina 776
bruijni, Drepanornis 776
bruniceps, Emberiza 168, 183, 233
brunnea, Alcippe 146
brunnea, Speirops 769
brunneicapilla, Aplonis 592, 595, 609
brunneiceps, Hylophilus 773
brunneiceps, Lagonosticta 490, 498, 525
brunneiceps, Lonchura 513
brunneigularis, Uraeginthus 500
brunneinucha, Atlapetes 217, 218, 268
brunneonucha, Leucosticte 445, 473
brunnescens, Atlapetes 216, 267
brunnescens, Cisticola 527
brunnescens, Nigrita 490, 492
brunnescens, Parus 18
brunnescens, Pipilo 213, 263
brunneus, Tachyphonus 286, 307
brunniceps, Myioborus 773
bryanti, Agelaius 18
bryanti, Tiaris 168, 261
Buarremon 165, 216— 218, 267 —269, 273
— melanops 267
Bubalornis 517—520, 522, 525
— albirostris 522
— — albirostris 329, 558
— — intermedius 496*, 529, 559
— — niger 929, 559
— — nyansae 559
— — senegalensis 558
— erythrorhynchus 559
Bubalornithinae 517, 518
Bucanetes 446, 447, 474
buccoides, Ailuroedus 663, 664, 665, 669
buceroides, Philemon 118, 133, 156
buceroides, Tropidorhynchus 157
789
buchanani, Emberiza 168, 173, 174, 175, 227
buchanani, Serinus 438, 460
Buchanga 631, 634, 635, 639 — 642
— atra 635, 640
— cineracea 641
Buchfink 185, 197, 434, 448, 450
Büffelweber 517, 529
buesingi, Thraupis 280, 292, 304,* 313
buettikoferi, Arachnothera 78, 97
buettikoferi, Nectarinia 768
bullockiü, Icterus 370, 380, 400*, 401, 415
Buphagidae, Buphaginae 591
Buphagus 591, 592, 603, 605
— africanus 591
— — africanus 603, 604, 622
— erythrorhynchus 603
— — caffer 594, 596, 604, 608*, 622
— — erythrorhynchus 604, 622
burchellii, Lamprotornis 597
burmanicus, Ploceus 523, 582
burmanicus, Sturnus 601, 619
burtoni, Callacanthis 446, 473
burtoni, Serinus 774
buruensis, Zosterops 769
Buschhäher 702
Buthraupis arcaei 772
— aureocincta 772
— aureodorsalis 772
— edwardsi 772
— eximia 772
— melanochlamys 772
— montana 772
— rothschildi 772
— wetmorei 772
buvryi, Coccothraustes 453, 484
buvuma, Nectarinia 74, 94
buxtoni, Zosterops 104
790
cabanisi, Emberiza 167, 168, 182, 183, 224*,
232
cabanisi, Lonchura 512
cabanisi, Melozone 215, 266
cabanisi, Poospiza 203, 254, 272*
cabanisi, Pseudonigrita 520, 531, 560
cabanisi, Tangara 296, 317
cabanisii, Molothrus 394, 395, 396, 427
cabanisii, Ploceus 523, 542, 577
cabaret, Acanthis 433, 445, 470
cacharensis, Zosterops 104
Cacicus 369, 377, 398, 399, 406, 879
— cela 370, 377, 404—407
— — cela 370, 371, 375, 376, 400*, 405, 406,
408, 411
— — flavicrissus 375, 411
— — vitellinus 375, 411
— chrysonotus 370, 377, 405, 412
— chrysopterus 370, 377, 392, 412
— decumanus decumanus #10
— haemorrhous 200, 359, 370, 376, 377, 407
— — affınis 376, 400*, 405 (als Psarocolius),
412
— — aphanes 412
— — haemorrhous 371, 376, 405 (als Psaroco-
lius), 408, 412
— holosericeus 370, 371, 401
— — holosericeus 378, 412
— koepckeae 774
— leucoramphus 774
— melanicterus 370, 371, 378, 412
— persicus 411
— sclateri 371, 377, 412, 774
— solitarius 359, 370, 377, 378, 412
— uropygialis 370
— — microrhynchus 377, 412
Cacomantis merulinus celebensis 96*
— pyrrophanes 117
— variolosus 117
— — macrocercus 53
caerulea, Guiraca 401
caerulea, Passerina 223, 276, 277
caerulea, Polioptila 404
caerulea, Thraupis 291, 312
caerulea, Urocissa 696, 710, 740
caeruleigula (für caeruleogula), Nectarinia 66,
86
caeruleirostris, Loxops 356, 357
caeruleocephala, Tangara 299, 319
caeruleogula, Nectarinia 25, 51, 53, 63, 71 (errore
jugularis), 66 u.86 (als caeruleigula)
caerulescens, Cyanocompsa 275
caerulescens, Dendroica 322, 326, 341
caerulescens, Dierurus 632, 633, 635, 642
caerulescens, Diglossa 302, 320
caerulescens, Estrilda 507
caerulescens, Passerina 771
caerulescens, Saltator 285
Fr, «
caerulescens, Sporophila 203, 207, 208, 258
caeruleus, Cyanerpes 282, 300, 304*, 319, 320
caeruleus, Cyanocorax 695, 696, 704, 720*, 732
caeruleus, Parus 6—8, 23, 764
caesar, Poospiza 770
caesia, Coracina 599
caesia, Emberiza 176, 181, 185, 228
caesia, Sitta 25, 26, 29, 531
cafer, Promerops 146, 160*, 164
caffer, Buphagus 594, 596, 604, 608*, 622
cairnsensis, Acanthorhynchus 141, 761
cairnsi, Dendroica 326, 341
Calamospiza 166, 223
— bicolor 236
— melanocorys 188, 236
calandra, Emberiza 146, 165—167, 169, 170,
171, 176, 179, 224 225,286. 73897 2uRR
453, 489
Calandrella 66, 337, 703
— cinerea brachydactyla 212
Calcarıus 165, 166, 409
— lapponicus 181, 184, 187
— — alascensis 187, 224*, 235
— — lapponicus 167, 186, 235
— mcecownii 186 (als maccownii), 235
— ornatus 187, 235
— pictus 187, 235
calcostetha, Nectarinia 50, 52, 55, 68, 76, 86
calidris, Vireo 307
californica, Aphelocoma 701, 702, 730
californicus, Agelaius 383, 418
californicus, Carpodacus 448, 476
californicus, Icterus 415
californicus, Pinicola 450, 480
californicus, Psaltriparus 70
caliginosa, Emberiza 170, 225
Callacanthis 431
— burtoni 446, 473
Callaeas 645, 658, 675, 723, 767
— cinerea cinerea 645, 648, 767
— — wilsoni 645, 648
Callaeidae 645, 648
callaina, Dacnis 280, 299, 319
calliparaea, Chlorochrysa 772
Callirhynchus 259
Callisitta 27
Calliste 299, 317 — 319
— cyanicollis 319
— desmarestii 318
callophrys, Tangara 772
Callothrus robustus 428
Calochaetes coccineus 772
Calocitta 675, 679, 697, 700
— formosa azurea 696, 707, 735
— — colliei 696, 707, 718, 735
calophrys, Hemispingus 771
Calornis 593, 607, 609
— kittlitzi 606
Calospiza 278, 296, 297 —299, 317— 319
— atricapilla 319
— chrysophrys 318
— guttata 318
— gyroloides 318
calvus, Sarcops 592, 594, 602, 621
Calyptophilus frugivorus 279
— — tertius 285, 306
Camarhynchus 165, 166, 765
— crassirostris 213, 263
— heliobates 770
— pallidus 765, 766
— parvulus parvulus 214, 263, 765
— — salvini 213, 263
— pauper 770
— prosthemelas 263
— psittacula 770
cambaiensis, Saxicoloides 169
camburni, Ploceus 575
campbelli, Phylidonyris 758
Campephagidae 654, 655
campestris, Euneornis 302, 320
Campylorhynchus 398
— griseus 399
— — albicilius 394
cana, Spizella 198, 248
cana, Thraupis 281, 290, 312, 395
canadensis, Caryothraustes 166, 221, 273
canadensis, Dendroica 341
canadensis, Perisoreus 709, 739
canadensis, Pinicola 480
canadensis, Sitta 27, 31, 32*
canadensis, Wilsonia 347
canaria, Serinus 202, 436, 456, 157
canariensis, Corvus 727, 761
canariensis, Fringilla 434, 455
canaster, Pipilo 263
canescens, Amphispiza 199, 249
- canescens, Phylidonyris 137, 158
canicapilla, Brachyspiza 240
canicapilla, Nigrita 487, 488, 491, 492
canicauda (s. canicaudus), Cardinalis 401
canicaudus, Cardinalis 271, (als canicauda)
401
caniceps, Carduelis 469
eaniceps, Junco 192, 193, 194, 243
caniceps, Lonchura 514
caniceps, Odontospiza 509
caniceps, Phrygilus 200, 251
caniceps, Serinus 430, 434, 438, 459
caniceps, Sitta 30
canicollis, Serinus 431, 436, 437, 439, 441, 457
canigularis, Chlorospingus 771
caniviridis,-Zosterops 111
cannabina, Acanthis 193, 197, 199, 431, 433,
436, 437, 441, 444, 445, 471, 521
canneti, Emberiza 234
canora, Tiaris 167, 211, 260
791
canorus, Cuculus 226, 393, 394, 399, 404, 407,
408, 528, 552, 727
cantans, Cisticola 527
cantans, Lonchura 509
cantans, Loxioides 356, 357, 358
cantoroides, Aplonis 594, 607
capellanus, Corvus 697, 724, 736*, 756
capensis (recte collaris), Anthreptes 82, 878
capensis, Corvus 675, 681, 684, 695-698,
703, 721, 722, 725, 736*, 752
capensis, Emberiza 168, 176, 178, 229, 230
capensis, Estrilda 497*, 520, 523, 528, 535,
552, 353, 554, 555, 588
capensis, Euplectes 520, 528, 535, 552, 393,
554, 555, 588
capensis, Ploceus, 519, 522, 540, 545, 574, 575
capensis, Zonotrichia 167, 168, 190, 191, 199,
202, 213, 216, 224*, 239-241, 394, 396,
398, 399
capensis, Zosterops 100, 71/
capistrata, Nesocharis 774
capistratus, Schistochlamys 305
capistratus, Serinus 437, 458
capitalba, Amblyospiza 523, 571
capitalis, Carduelis 443, 465
capitalis, Perisoreus 709, 739
capitalis, Pezopetes 218, 268
capitalis, Ploceus 519, 546, 580
capitata, Paroaria 168, 270
Caprimulgidae 114, 637
Caprimulgus europaeus 390
— madagascariensis 636
caprius, Chrysococcyx 533, 540, 543, 544, 552
cara, Aethopyga 76, 97
carbo, Ramphocelus 281, 285, 289, 304*, 310,
311, 396
carbonacea, Cyanocitta 701, 730
carbonaria, Diglossa 302, 320
carbonarius, Dierurus 632, 633, 636, 643
carbonarius, Phrygilus 770
Cardellina rubrifrons 333, 347 -
Cardinalinae 165, 166
cardinalis, Cardinalis 167, 220, 221, 271, 401
Cardinalis 165— 167, 220, 278, 403
— cardinalis 220, 221
— — canicaudus 271, (als canicauda) 401
— — cardinalis 167, 271
— — floridanus 271
— — igneus 271
— — magnirostris 271
— — superbus 271
— — yucatanicus 271
— phoeniceus 220 u. 221 (als phoenicea), 271
— sinuatus 221, 402
— — fulvescens 221, 273
— — peninsulae 273
— — sinuatus 271, 272*
— — texana 271
192
Cardinalis sinuatus virginianus 27]
cardinalis, Myzomela 119, 121, 122, 148, 149,
160*
cardinalis, Quelea 526, 528, 550, 584
cardonai, Myioborus 773
Carduelinae 430
carduelis, Carduelis 431, 433, 436, 441, 443,
444, 445, 467 —469
Carduelis 51, 170, 208, 336, 403, 430, 431,
435—437, 441, 443, 445, 457, 458, 462,
469—472
— ambigua 431, 441, 443
— — 448, 465
— atrata 431, 444, 466
— atriceps 774
— barbata 431, 441, 443, 444, 166, 492*
— carduelis 431, 436, 441, 443, 444
— — africana 468
— — balcanica 468
— — britannica 468
— — caniceps 469
— — carduelis 433, 445, 467
— — major 433, 468
— — niediecki 468
— — paropanisi 433, 469
— — parva 468
— — propeparva 468
— — subulata 433, 469
— — tschusii 269
— chloris 74, 187, 199, 430, 431, 436, 439,
441, 442, 449, 451, 452
— — aurantiiventris 442, 463
— — chloris 433, 441, 463
— — chlorotica 442, 464
— .— madaraszi 442, 463
— — mallorcae 442, 463
— — turkestanica 433, 442, 464, 767
— crassirostris 431, 444, 774
— — crassirostris 444
— cucullata 430, 431, 434, 443, 465, 492*
— dominicensis 774
— lawrencei 430, 441, 444, 462, 467
— magellanica 431, 441
— — capitalis 443, 465
— — icterica 430, 443, 466
— — tucumana 443, 466
— — urubambensis 443, 465
— notata 430
— — notata 434, 444, 466
— olivacea 774
— pinus 431, 441, 774
— — pinus 433, 443, 465
— psaltria 402, 430, 441
— — arizonae 467
— — columbiana 434, 444, 467
— — crocea 467
— — hesperophila 444, 467
— — mexicana 467
Carduelis psaltria psaltria 434, 444, 467
— siemiradzkii 774
— sinica 175, 431, 441—443, 448
— — chabarovi 464
— — kawarahiba 442, 464
— — minor 442, 465
— — sinica 441, 442, 443, 464
— — ussuriensis 442, 464
— spinescens 774
— spinoides 431, 436, 441, 443, 465
— — ambigua 465
— — spinoides 433, 442, 465
— spinus 433, 436, 443, 465
— thibetanus (recte zu Serinus) 434
— tristis 430, 441
— — jewetti 444, 467
— — pallida 444, 467
— — salicamans 444, 467
— — tristis 433, 444, 466
— uropygialis 774
— xanthogastra stejnegeri 444, 466
— — xanthogastra 444, 466
— yarrellii 774
caribaeus, Quiscalus 425, 432*
caribaeus, Vireo 773
carmioli, Chlorothraupis 279, 285, 307
carmioli, Vireo 361, 365
carneipes, Cyanerpes 282, 300, 319
carnipes, Coccothraustes 431, 433, 454, 485, 486
carnipes, Mycerobas 485
carolae, Parotia 776
caroli, Anthoscopus 5, 12, 763
carolinae, Macgregoria 678, 690
carolinensis, Junco 192, 242
carolinensis, Parus 6, 15, 16
carolinensis, Sitta 26, 27, 31
carolinus, Euphagus 187, 371, 390, 391, 426,
432*
carpalis, Aimophila 199, 250, 401/2
carpentariae, Philemon 133, 156
Carpodacus 57, 175, 203, 430, 431, 441, 442,
446 —448, 452
— cassinii 430, 448, 477
— dubius 479
— edwardsii 774
— — rubicunda 433 (als edwardsi), 449, 478
— eos 774
— erythrinus 448, 452 (als erythrina), 543
— — erythrinus 433, 447, 476, 492*
— — ferghanensis 433, 447, 476
— — roseatus 433, 447, 449, 476
— mexicanus 430, 431
— — amplus 448, 477
— — clementis 448, 477
— — frontalis 174, 448, 477
— — megregori 448, 477
— — maximus 448, 477
— — rhodocolpus 477
Carduelis mexicanus roseipectus 477
— — ruberrimus 448, 477
— nipalensis 430
— — kangrae 447, 475
— pulcherrimus argyrophrys 448, 478
— — pulcherrimus 433, 448, 477
— — waltoni 448, 478
— puniceus humii 433, 450, 480
— — kilianensis 437, 450, 479
— purpureus 431, 441, 447, 448
— — cealifornicus 448, 476
— — nesophilus 433, 448, 476
— — purpureus 48, 476
— rhodochlamys grandis 449, 479
— — kotschubeii 449, 479
— — rhodochlamys 433, 449, 479
— rhodochrous 433 (als Carpocadus), 449, 478
— rhodopeplus 774
— — rhodopeplus 449, 478
— roborowskii 774
— roseus roseus 478
— — sachalinensis 433, 449, 478
— rubescens 774
— rubicilla severtzovi 433, 449, 479
— rubicilloides 447, 450
— — lapersonnei 431, 449, 479
— — Jucifer 449, 479
— — rubicilloides 449, 479
— synoicus 430
— — beicki 449, 478
— — synoicus 449, 478
— thura blythi 449, 478
— — femininus 449, 479
— — thura 433, 449, 479
— trifasciatus 767
— vinaceus 774
Carpospiza 517, 535, 568
carteri, Meliphaga 127, 752
carunculata, Creatophora 614
carunculata, Foulehaio 115, 116, 129, 154
carunculata, Paradigalla 684, 692, 776
carunculatus, Anthochaera 116, 119, 131,
; 134, 136, 144, 145, 160*, 164
carunculatus, Creadion 645, 648
caryocatactes, Nucifraga 697, 698, 717, 720*,
748
Caryothraustes 167, 221, 273, 278
— canadensis poliogaster 166, 221, 273
— — scapularis 221, 273
— humeralis 771
caschmirensis, Parus 6, 21
cashmirensis, Sitta 26, 30
- easpius, Garrulus 737
Cassiculus 378, 412
cassicus, Cracticus 654, 695, 656, 659
Cassidix 338— 390, 404, 423, 429
— major 170
— mexicanus 170
793
Cassidix tenuirostris 424
cassidix, Meliphaga 128, 753
cassini, Malimbus 775
cassini, Molothrus 396, 427
cassini, Psarocolius 774
cassinii, Aimophila 199, 250
cassinii, Carpodacus 430, 448, 477
cassinii, Mitrospingus 279, 285, 307
cassinü, Vireo 365
castanea, Dendroica 322, 329, 344
castanea, Sitta 26, 28, 30
castaneiceps, Dendroica 325, 341
castaneiceps, Emberiza 173, 227
castaneiceps, Lysurus 218, 269
castaneiceps, Ploceus 519, 520, 523, 540, 541, 576
castaneifrons, Atlapetes 217, 268
castaneigula, Ploceus 576
castaneiventris, Sporophila 168, 207, 209, 210,
259
castaneofuscus, Ploceus 545, 579
castaneothorax, Lonchura 487, 490, 515
castaneoventris, Dolothraupis 772
castanonota, Ptilorrhoa 684
castanonota, Tangara 318
castanops, Ploceus 519— 521, 542, 577
castanopterus, Passer 532, 563, 774
castanotis, Poephila 487, 490, 506
Catamblyrhynchus diadema 771
Catamenia 166
— analis analis 211, 260
— homochroa 770
— inornata 770
— oreophila 770
catellatus, Passer 566
Catharopeza bishopi 773
Catharus aurantiürostris 401
— fuscescens 404
— occidentalis oceidentalis 217
— ustulatus 450
cathoecus, Dierurus 633, 634, 640
caucae, Passerina 394
caucasicus, Sturnus 600, 617
caudacutus, Ammodramus 195, 196, 246
caudacutus, Passerherbulus 196, 246
caudata, Chiroxiphia 282
caudata, Pica 745
caudatus, Aegithalos 3, 4, 5, 9, 32*, 36
caudatus, Lamprotornis 591, 597, 612
caurina, Aphelocoma 701, 730
caurina, Spizella 198, 248
caurinus, Agelaius 218
caurinus, Corvus 722, 723, 754
cavendishi, Estrilda 490, 503, 527
cayana, Dacnis 280, 282, 299, 319, 432*, 766
cayana, Tangara 279, 280, 282, 293 (T. cayana),
298, 299, 318, 396
cayanensis, Icterus 370, 379, 400*, 412, 413,
471
194
cayanensis, Myiozetetes 294, 296
cayanus, Cyanocorax 407, 776
cayennensis, Euphonia 279, 296, 316
caymanensis, Vireo 362, 366
cearensis, Cyclarhis 360, 363
cecilae, Corvus 696, 698, 724,
cedrorum, Bombyeilla 402
cela, Cacicus 370, 371, 375. 376, 377,
404—408, 411
celaena, Rhodothraupis 771
celata, Vermivora 322, 323, 338
celebensis, Anthreptes 54, 80
celebensis, Basilornis 775
celebensis, Cacomantis 96*
celebensis, Corvus 696, 721.
celebensis, Myza 770
celebensis, Oriolus 623, 625, 629
Celebes-Stare 591
celebicum, Dicaeum 42, 44, 47
centralis, Cyanocorax 706, 734
centralis, Estrilda 487, 502
centralis, Pyrrhocorax 698, 749
centralis, Vidua 525, 527, 557
Centronyx 165, 196, 246
cephaelis, Nectarinia 53, 57, 82
Cephalopyrus 3, 5, 6
— flammiceps 5
— — flammiceps 13
Cercomacra 301
Certhia 36, 295
— brachydactyla 7, 36
— — brachydactyla 32*, 40
— — megarhynchos 36, 40
— disceolor 37
— — discolor 36, 20
— — manipurensis 36, 40
— familiaris 36, 37
— — albescens 20
americana 40
bianchii 39
brittanica 39
corsa 39
— — familiaris 32*, 39
— — hodgsoni 39
leucosticta 40
macrodactyla 36, 39
mexicana 40
montana 39
nigriceps #0
nipalensis 37
occidentalis 39
— — zelotes 36, 20
— himalayana 36, 37
— — himalayana 40
— — limes 36, 20
— — taeniura 37, 40
— nipalensis 37, 40, 768
— scandulaca 39
736*, 758
736*, 752
400*,
Certhidea 166, 321, 337
— olivacea fusca 213, 263
— — mentalis 764, 766
— — olivacea 213, 263
Certhiidae 3, 25, 28, 36, 39, 768
Certhiinae 36
Certhiola 351, 354
Certhionyx 117, 140, 161
— niger 116, 117, 119, 123, 141, 149, 160*
— variegatus 113, 116, 119, 123, 137, 150, 160*
Certhiparus 3
cerulea, Dendroica 322, 326, 341
cervicalis, Garrulus 736
cervicalis, Paroaria 270
cervinicauda, Drepanornis 684, 692
cerviniventris, Chlamydera 663, 666, 668, 671
cetti, Cettia 59
Cettia cettia 59
ceylonense, Dicaeum 46
ceylonensis, Oriolus 626, 629
ceylonensis, Zosterops 100, 105
ceylonicus, Dicrurus 632, 633, 638, 644
chabarovi, Carduelis 464
Chaetoptila angustipluma 770
Chaetorhynchus 631, 632
— papuensis 633, 639
chalcea, Nectarinia 71,
Chaleites 44, 75
— basalis 117
— Jlueidus 117
— maculatus 96*
— — maculatus 53
— xanthorhynchus 53
chalcomelas, Nectarinia 768
Chalcomitra 50, 83—85, 88, 89
— acik 85
Chalcoparia 80
— lepida 80
— singalensis singalensis 80
Chalcopsar 597, 612
Chalcostetha 63, 86
chaleurus, Lamprotornis 592, 593, 597, 611
chalybaeus, Lamprotornis 592 (als chalybeus),
593, 595, 397, 598, 611
chalybatus, Manucodia 677, 680, 685, 690
chalybea, Euphonia 294, 295, 766
chalybea, Lamprocorax 607
chalybea, Nectarinia 51, 68, 69, 89
chalybea, Progne 303
chalybeata, wa 518, 519, 523, 324, 525, 527,
528, 557
chalybeus, Cinnyris 89, 90
chalybeus, Lamprotornis 592 (recte chalybaeus)
Chamaea 193
— fasciata 401
Chamaethlypis 346
changamwensis, Nectarinia 57, 82
Chaptia 631, 635, 636, 642
91
Chaptia aenea 631
Charadriiden 763
Charitospiza eucosma 771
charmosyna, Estrilda 489, 526, 774
Chaunoproctus ferreorostris 774
Chera 555, 590
chermesina, Myzomela 769
chiapensis, Passerina 277
Chibia 631, 632, 636, 637, 642, 643
chilensis, Cyanocorax 704, 705, 732 |
chilensis, Tangara 279, 280, 282, 297, 317
chilensis, Zonotrichia 190, 191, 240
cehinensis, Cissa 696, 698, 700, 710, 711, 712,
720*, 741
chinensis, Oriolus 623, 625, 626, 628
chiniana, Cisticola 555
chiriquensis, Geothlypis 331, 345
Chiroxiphia caudata 282
chivi, Vireo 362, 366, 399
Chlamydera 372, 389, 663, 664, 667, 668, 679
— cerviniventris 663, 666, 668, 671
— lauterbachi uniformis 664, 668, 671
— maculata 668
— — guttata 664, 666, 667, 671
— — maculata 663, 667, 671, 679
— nuchalis 663
— — nuchalis 668, 671
— — orientalis 668, 671, 672*
— — oweni 668
— — yorki 668, 671, 672*
— recondita 668
Chlamydodera 671
Chloebia 487
— gouldiae 490, 508
— mirabilis 508
Chlorauchenia 84
chlorieterus, Orthogonys 771
ehloris, Carduelis 74, 187, 199, 430, 431, 433,
436, 439, 441, 442, 443, 449, 451, 452, 463,
464, 466, 767 i
Chloris 51, 170, 441 — 443, 463— 465
— sinica sinica 441
chloris, Piprites 675
chloris, Zosterops 99, 106
chlorocephalus, Oriolus 775
Chlorocharis emiliae 769
Chlorochrysa calliparaea 772
— nitidissima 772
— phoenicotis 772
Chloroeichla simplex 182, 453
chloronota, Zosterops 112
chloronotus, Arremonops 223, 267
chlorophaea, Zosterops, 112
Chlorophanes 280
— spiza 300, 301, 320
— — arguta 300, 319
— — spiza 282, 300, 304*, 319
Chlorophonia 279, 296
795
Chlorophonia cyanea longipennis 316
— — torrejoni 316
— flavirostris 772
— oeceipitalis 281
— — oceipitalis 376
— pretrei 316
— pyrrhophrys 316
— viridis 316
Chloropsis cochinchinensis 78
chloropsis, Melithreptus 130, 755
chloropterus, Lamprotornis 597
Chloroptila 436
chloropyga, Coereba 337, 354
chloropygia, Nectarinia 51, 69, 70, 90
chloropygius, Cinnyris 90
Chlorornis riefferii 280
— — riefferii 283, 305
Chlorospingus 305, 306
— albitempora 306
— atropileus (heute zu Hemispingus) 279
— canigularis 771
— flavigularis 771
— flavovirens 771
— inornatus 771
— ophthalmicus 279
— — flavopectus 284, 306
— — novicius 284, 306
— — regionalis 283, 306
- — parvirostris 771
— pileatus 771
— punctulatus 771
— rubrirostris (jetzt bei C'nemoscopus) 279
— semifuscus 771
— tacarcunae 771
— zeledoni 771
Chlorothraupis 278
— carmioli 279
— — carmioli 285, 307
— olivacea 771
— stolzmanni 771
chlorotiea, Carduelis 442, 464
chlorotica, Euphonia 279, 293, 294, 314
Chlorura 213, 263, 487, 507
ehlorurus, Pipilo 213, 263
Chondestes 165, 166, 403
— grammacus grammacus 198, 249
— — strigatus 198, 249
chopi, Aphobius 423
chopi, Gnorimopsar 387, 422, 423, 432*
chorassaniceus, Parus /8
christianae, Nectarinia 50, 53, 63, 86
christinae, Aethopyga 770
chrysaea, Ploceela 581
chrysater, Icterus 378, 379, 413
chryseola, Wilsonia 333, 347, 352*
chrysocephalus (manchmals nicht sub cayanen-
sis), Ieterus 371, 379, 396, 400*, 413
chrysocephalus, Sericulus 664, 666, 670, 672*
796
Chrysococcyx caprius 533, 540, 543, 544, 552
— klaasii 542
chrysogaster, Basileuterus 773
chrysogaster, Pheucticus 167, 220, 270
chrysogenys, Arachnothera 98, 764
chrysogenys, Oreornis 116, 119, 129, 154
chrysoma, Arremonops 267
chrysomelas, Chrysothlypis 771
Chrysomitris 441, 466
chrysonotus, Cacicus 370, 377, 405, 412
chrysonotus, Ramphocelus 311
chrysoparia, Dendroica 322 (als chrysopa), 342
chrysopasta, Euphonia 772
chrysopeplus, Pheucticus 166, 167, 220, 270,
394
chrysophrys, Calospiza 318
chrysophrys, Emberiza 180, 231
chrysophrys (recte guttata boliviana), Tangara
280, 878
chrysops, Cyanocorax 696, 697, 703,
709, 733
chrysops, Meliphaga 37, 115, 116, 118, 119,
126, 128, 152, 144, 145, 160*, 163, 164
chrysops, Myioborus 334, 348
chrysoptera, Anthochaera 116, 119
chrysoptera, Neositta 32*, 34, 35
chrysoptera, Vermivora 322, 323, 338
chrysopterus, Cacicus 370, 377, 392, 412
chrysopterus, Xanthornus 412
Chrysoptilus melanochlorus 392
chrysorrheum, Dicaeum 42, 45, 46
Chrysothlypis chrysomelas 771
— salmoni 771
chrysotis, Ptilotis 150
chrysotis, Tangara 772
chubbi, Mandingoa 490, 493
cia, Emberiza 54, 166, 168, 170, 171, 172, 173,
1747.179,,4825 185, 398972247236, 318
Cieinnurus 673, 676, 678, 683
— regius 677
— — 686, 693
inclorhamphus 36, 38
Cinclus 445, 536
cincta, Notiomystis 115, 117, 132, 156
cincta, Philemon 156
cineta, Poephila 490, 507
cinctus, Parus 16, 878
cinctus, Saltator 771
cineracea, Buchanga 641
cineracea, Emberiza 175, 181, 227
cineracea, Myzomela 121, 122, 148
cineraceus, Sturnus 592, 601, 618
cinerascens, Aplonis 775
cinerascens, Dendrocitta 690, 713, 714, 743
cinerascens, Parus 6, 7, 19
cinerea, Calandrella 212
cinerea, Callaeas 645, 648, 767
cinerea, Creatophora 591, 594, 599, 604, 614
705, 707,
cinerea, Emberiza 227
cinerea, Estrilda 489, 502
cinerea, Gallicrex 283
cinerea, Myzomela 119, 148
cinerea, Piezorhina 770
cinerea, Poospiza 203, 254, 255, 272*
cinerea, Ptilotis 156
cinerea, Struthidea 647, 648, 672*
cinerea, Zosterops 99, 109
cinereicollis, Basileuterus 773
cinereigulare, Dicaeum 46
cinereola, Sporophila 207, 209, 258
cinereovinacea, Euschistospiza 495
cinereum, Conirostrum 336, 351 r
cinereus, Acridotheres 602, 620
cinereus, Artamus 649, 650, 651, 653
cinereus, Cracticus 655, 659
cinereus, Parus 21, 27
cinereus, Pyenopygius 116, 119, 132, 156
cinnamomea, Emberiza 168, 178, 229
cinnamomea, Sporophila 770
einnamomeus, Hypocryptadius 769
cinnamomeus, Passer 54, 523, 563
Cinnamopteryx 518, 579
cinnamoventris, Sitta 26, 28, 30
Cinnyricinclus femoralis 775
— leucogaster 592
— — verreauxi 598, 612
— sharpii 775
Cinnyris 50, 82, 83, 85—91, 93, 94
— angolensis 84
— chalybeus bractiatus 89
— — ludovicensis 90
— chloropygius 90
— leucogaster 89
— neglectus 82
— obscurus 82
— reichenowi 90
— — genderuensis 90
— splendidus 93
— superbus superbus 94
— verticalis eyanocephalus 83
idee Emberiza 168, 170, 173, 174, 175, 226,
997
ciopsis, Embreiza 173, 175, 227
Ciridops anna 773
ciris, Passerina 168, 223, 272*, 277
cirlus, Emberiza 166, 167, 169, 170, 172, 175,
176, 185, 198, 203, 224*, 228, 636
cismontanus, Junco 192, 242
Cissa 695, 708, 712
— chinensis 696, 710
— — chinensis 698, 700, 711, 712, 720*, 741
— — minor 696, 711, 741
— thalassina 696
— — hypoleuca 696, 712, 741
— — thalassina 712, 741
Cissilopha 695, 697, 703
Cissilopha beecheii 686, 697, 703, 732
— melanocyanea 696, 697, 703
— — melanocyanea 703, 732
— sanblasiana 732
— — nelsoni 703, 732
— — yucatanica 675, 696, 697, 703, 704, 732
Cissolopha 695
Cissomela pectoralis 116, 119, 123, 141, 161
Cissopis 230— 282
— leveriana leveriana 281, 283, 304*, 305
— — major 283, 305
— minor 305
Cisticola 5, 51, 52, 68, 70, 527, 533, 552, 356
(einmal als Cissticola)
— cantans 527
— brunnescens 527
— chiniana victoria 555
— galactotes lugubris 527
— juneidis cisticola 208
— — perennia 555
— tinniens tinniens 555
eisticola, Cisticola 208
eiterior, Pytilia 487, 493
eitrea, Piranga 309
citrea, Protonotaria 322, 330, 345, 352*, 403
eitreogularis, Philemon 116, 132, 133, 156, 160*
eitrina, Sicalis 203, 255
eitrina, Wilsonia 322, 329, 333, 347
eitrinella, Emberiza 166, 167, 170, 171, 172,
174—176, 179, 185, 201, 225, 372, 390, 678
ceitrinella, Serinus 431, 433, 436, 440, 457
eitrinelloides, Serinus 431, 433, 437, 158
eitrinellus, Atlapetes 217, 218, 268
eitrinipectus, Serinus 774
clamans, Philemon 136, 157
Clamator 407
— glandarius 709, 712, 715, 722, 725, 726
elamosus, Cuculus 663
elara, Erythrura 488, 508
clarae, Arachnothera 769
clarescens, Neochmia 490, 506
elarkei, Amandava 490, 491, 496*, 504, 527
(als Estrilda)
clarkei, Estrilda (recte Amandava) 527
elarus, Basileuterus 335, 349
clarus, Ptiletis 679, 680
elelandi, Manorina 142, 162
elementae, Pipilo 264
clementae, Zonotrichia 189
clementiae, Nectarinia 52, 65, 87
clementis, Carpodacus 448, 477
cleonensis, Zonotrichia 189
Cleptornis 123, 130, 137
— marchei 116, 129, 154
Climacteridae 36, 47
Climacteris 36
— affinis 37, 41
— erythrops 37
Climacteris erythrops erythrops 47
— — olinda 41
— leucophaea 37, 38
— — leucophaea £1
— — minor 38, 41
— melanura 37
— — melanura 37, 41
— — wellsi 37, 41
— pieumnus 47
— — melanota 37, 21
— — pieumnus 33*, 37, 41
— rufa 37, 41
— scandens 37, 41
— superciliosa 47
Clytospiza monteiri 487, 491, 495
Cnemophilinae 673
Cnemophilus 675, 679
— macgregorii macgregorii 678, 690
Cnemoscopusrubrirostris 279 (als Chlorospingus)
— — rubrirostris 284, 306
Cnemotriccus varius 399
coccinea, Loxops 356, 367
coccinea, Pyrrhula 452, 483
coccinea, Vestiaria 355, 337
coccineus, Calochaetes 772
eoccineus, Pyrenestes 494
coccinigastra, Nectarinia 51, 72, 93
Coccopygia 487, 502
ceoccothraustes, Coccothraustes 430, 431, 433,
453, 454, 184, 492*
Coceothraustes 389, 430, 431, 453, 667
— abeillei 774
— affınis 774
— carnipes 431, 454
— — carnipes 433, 285, 486
— — merzbacheri 486
— — nanschanicus 486
— — speculigerus 454
— coccothraustes 430, 431, 453, 454
— — buvryi 453, 484
— — ceoccothraustes 433, 453, 284, 496*
— — japonicus 453, 284
— — nigricans 453, 484
— icterioides 431, 433, 453, 454, 185
— melanozanthos 431, 454, 485
— migratorius 431, 453
— — migratorius 453, 484, 496*
— — sowerbyi 453, 485
— melanura 284
— personatus 431, 453
— — personatus 453, £85
— vespertinus 430, 431
— — brooksi 454, 486
— — montanus 433, 454, 186
— — vespertinus 454, £86
— warreni 454, 486
cochinchinensis, Chloropsis 78
cockerelli, Lichmera 116, 121, 147
798
cockerelli, Philemon 116, 118, 119, 133, 134,
135, 157, 681, 704
coelebs, Fringilla 57, 69, 179, 185, 197, 293,
431, 433, 434, 435, 448, 450, 452, 455, 456,
496*, 531
coelestis, Thraupis 281, 291, 312
Coereba 206, 211, 213, 279, 302, 320, 321, 337,
356, 398
— cyanea 279, 300, 319, 320
— flaveola 336
— — aterrima 353
— — atrata 353
— — bahamensis 322, 351
— — bananivora 353
— — barbadensis 352*, 353
— — bartholemica 337, 353
— — chloropyga 337, 354
— — columbiana 351
— — dominicana 353
— — flaveola 337, 353
— — guianensis 353
— — luteola 353
— — magnirostris 337, 351
— — martinicana 353
— — mexicana 353
— — minima 322, 354
— — newtoni 353
— — portoricensis 322, 337, 353
— — sacharina 353
— — uropygialis 353
— wellsi 353
Baches 913, 278, 321, 393
coerulescens, Aphelocoma 696, 697, 701, 702,
1202078050094
coerulescens, Saltator 167, 274
cognatus, Vireo 363
cognominata, Emberiza 182, 183, 232
Coliostruthus 518, 590
Colius 381
Coliuspasser 518, 519, 553 — 555, 587 —590
collaris, Anthothreptes 81
collaris, Anthreptes 50—53, 55, 56, 57, 81, 82,
96*, 878.
collaris, Anthrothreptes 87
collaris, Corvus 750
collaris, Ploceus 523, 544, 579, 767
collaris, Sporophila 257
colliei, Calocitta 696, 707, 718, 735
Colluricinela 651, 679, 699
collurio, Lanius 129, 217, 356, 522, 631, 636,
649 — 651, 707, 713
collybita, Phylloscopus 76, 408
Coloeus 695, 699, 719, 750, 751
— monedula 719
— neglectus 719
colonorum, Corvus 724, 756
coloria, Erythrura 774
columbiana, Carduelis 434, 444, 467
columbiana, Coereba 351
columbiana, Nucifraga 717, 748
columbiana, Sicalis 204, 255
comitata, Muscicapa 550
commixtus, Parus 21, 27
communis, Parus 6, 13, 14
communis, Sylvia 208
comorensis, Nectarinia 51, 67, 88
compilator, Corvus 721, 752
Compsocoma 293
— flavinucha (jetzt Anisognathus flavinuchus)
279
— sumptuosa 314
Compsothlypis 324, 339
Compsothraupis 278, 283
— loricata 279 (als loricatus), 283, 305
comri, Manucodia 666, 675, 681, 690, 691
concinna, Euphonia 772
coneinnus, Aegithalos 3 ‚4, 10, 32*
concolor, Amaurospiza 211, 260, 401
concolor, Dicaeum 42, 46, 47
concolor, Euplectes 554, 589
concolor, Neospiza 774
concolor, Progne 303
concolor, Xenospingus 770
concreta, Guiraca 275
confinis, Pooecetes 208
confusus, Philemon 134, 157
congensis, Nectarinia 768
congica, Lagonostieta 499
conirostris, Arremonops 167, 267, 394
conirostris, Geospiza 167, 263, 764, 766
Conirostrum 321
— albifrons 773
— bicolor 301, 336, 396
— — bicolor 322, 336, 351, 352*
— cinereum 351
— — littorale 336, 351
— ferrugineiventre 336, 351, 773
— leucogenys 773
— margaritae 773
— rufum 773
— sitticolor sitticolor 336, 351
— speciosum 773
— tamarugensis 773
connectens, Corvus 697, 724, 756
Conopophaga 114, 635
Conopophagidae 114
Conopophila 117, 118
— albigularis 161
— albogularis 115, 117
— — albogularis 119, 140, 161
— pieta 116, 117, 123, 140, 22
— rufigularis 161
— rufogularis 115, 117
— — queenslandica 119 (als Myzomela), 140, 161
— — rufogularis 119 (auch als Myzomela), 140,
160*, 161
Conopophila rufogularis whytei 115, 117, 120,
139, 159
Conothraupis mesoleuca 771
— speculigera 771
consobrinorum, Zosterops 769
consobrinus, Remiz 12
eonspieillata, Zosterops 100, 101, 105
eonspicillatus, Basileuterus 773
Contopus virens 328, 404
contra, Sturnus 592, 601, 618
contrusus, Quiscalus 425
cookei, Sitta 25. 31
cooki, Cyanopica 696, 697, 700, 706, 712, 720*,
741
cooperi, Piranga 288, 309
cooperi, Zonotrichia 239
coquerellii, Nectarinia 768
Coracina 624, 654
— caesia pura 599
eoralliirostris, Hypositta 768
corallirostris, Hypositta 768
corax, Corvus 696—698, 719,
727, 728, 760, 761
Corcoracinae 646
Corcorax 646, 675, 681, 695
— melanorhamphus 646, 648, 672*
eorinna, Hermotimia 86
corinna, Nectarinia 63
corniculatus, Philemon 116, 119, 133, 134, 136,
457
cornix, Corvus 698, 701, 716, 718, 722, 723,
724—726, 736*, 755
coronata, Cyanocitta 730
eoronata, Dendroica 322, 328, 343, 404
ceoronata, Paroaria 269
coronata, Zeledonia 335, 350
eoronata, Zonotrichia 242
coronatus, Ampeliceps 592, 602, 621
coronatus, Basileuterus 349
ceoronatus, Malimbus 775
coronatus, Remiz 5, 1/1
coronatus, Tachyphonus 215, 279,
256, 237, 293, 308, 383
corone, Corvus 201, 220, 529, 654,
ge ul, a el: 119:
ww ne
722— 724, 726,
280, 285,
656, 657.
216 719,
Be naiden. Chrvus 698, 724, 125, 758
corruscus, Lamprotornis 396, 610
corsa, Certhia 39
ceorsicana, Serinus 436, 157
corsicanus, Garrulus 735
corsus, Parus 20
Corvidae 593, 645, 646, 654, 675, 677, 678,
695, 699, 700, 725, 776
Corviden 686, 695—697, 712, 715, 716, 718
corvina, Aplonis 775
corvina, Sporophila 208, 257
Corvinae 677
799
Corvini 677
Corvinoidea 677
Corvultur 695, 728, 762
Corvus 200, 553, 555, 601, 695— 697, 699, 701,
702, 704, 705, 711, 714, 716, 717, 719, 721,
723 — 7125, 726, 727
— albicollis 696— 698, 725, 728, 762
— albus 697, 698, 7235, ER 75:
— americanus 753
— bennetti 696, 698, 7253. 736*, 758
— brachyrhynchos 697, 722, 723
— — brachyrhynchos 698, 722, 753
— — foridanus 754
— — hesperis 698, 722, 753
— — pascuus 722,754
— — paulus 698, 722, 753
— capensis 675, 684, 695—6983, 703,
125, 136,192
— — kordofanensi
— — minor 722, 75:
— caurinus 722,7 £
— corax 696, 697, 719, 724, 726— 728
— — canariensis 727. 761
— — corax 698, 719, 726, 728, 760
— — hispanus 727, 760
— — islandicus 726, 760
— — kamtschaticus 722, 727, 761
— — laurencei 761
— — principalis 726, 727, 760
— — sibiricus 761
— — sinuatus 697, 726. 736*, 760
— — subcorax 698, 727, 761
— — tibetanus 727, 761
— — tingitanus 726, 727, 761
— — varıus 726. 760
— corone 201, 220, 529, 696, 697, 705. 707,
TRIER RETTET,
— — capellanus 697, 724, 736*, 756
— — cornix 698, 701, 716, 718, 722, 7
126, 736*, 755
— — corone 645, 654, 656, 657, 698, 719, 722,
723, 127, 753
— — orientalis 723, 755, 736
— — pallescens 755
— — sardonius 698, 724, 755
— — sharpii 724, 756
— coronoides 696, 724
— — australis 758
— — novaanglica 758
_ — perplexus 698, 725, 758
«21, 724,
122, 752
2
— crassirostris 696. 697, 3 762
— ceryptoleucus 725, 736*, 759
— dauuricus 696, 698, 719. 136*, 731
— enca 696, 721
— — celebensis 696, 721, 736*, 752
— — compilator 721, 752
— — enca 69, 721, 752
— — pusillus 698, 721, 752
800
Corvus enca violaceus 696, 721, 752
— florensis 776
— frugilegus 645, 655, 696, 697, 719, 721— 725
— — frugilegus 698, 722, 727, 753
— — pastinator 722, 753
— — tschusii 753
— fuscicapillus 724, 776
— — fuscicapillus 721, 752
— imparatus 722, 723, 754
— impudicus 757
— jamaicensis 722, 723, 754
— kubaryi 776
— leucognaphalus 696, 723, 736*, 755
— macrorhynchos 715
— — andamanensis 724, 757
— — colonorum 724, 756
— — connectens 697, 724, 756
— — culminatus 698, 724, 757
— — intermedius 698, 699, 724, 757
— — japonensis 724, 756
— — levaillantii 698, 724, 757
— — macrorhynchos 724, 757
— — mandshuricus 724, 756
— — osal 724, 756
— — philippinus 698, 724, 757
— — tibetosinensis 697, 698, 724, 757
— mexicanus 754
— mellori 696, 725, 758
— monedula 695, 696, 701, 714, 717, 719, 721,
724, 751
— — collaris 750
— — hilgerti 751
— — monedula 698, 719, 750
— — soemmeringii 698, 719, 750
— — spermologus 698, 751
— moneduloides 696, 697, 721, 751
— nasicus 696, 723, 736*, 754
— neglectus 751
— orru cecilae 696, 698, 724, 736*, 758
— — insularis 697, 724, 758
— — orru 698, 721, 724, 758
— ossifragus 698, 754
— palmarum palmarum 722, 754
— rhipidurus 726, 727, 761
— ruficollis edithae 726, 759
— — ruficollis 726, 759
— scapulatus 759
— sinaloae 722, 754
— splendens 695—697, 717, 723
— — insularis 721, 751
— — protegatus 719, 751
— — splendens 698, 719, 736*, 751
— — zugmeyeri 719, 736*, 751
— tasmanicus 696
— — tasmanicus 725, 758
— torquatus 725, 758
— tristis 721, 724, 752, 776
— tropicus 696, 697, 725, 759
Corvus typicus 776
— umbrinus 759
— validus 776
— vulturinus 762
— woodfordi 776
Corydon 114
coryi, Phaenicophilus 285, 306, 766
coryi, Tiaris 261
Coryphaspiza melanotis 771
Coryphospingus 166, 219, 359, 398
— cristatus 269
— eucullatus 269
— — fargoi 219, 269
— — rubescens 219, 269
— pileatus 219
— — brevicaudus 219, 269
— — pileatus 219, 269
Coryphospiza 165, 202, 253
corythaix, Basilornis 775
Cosmopsarus regius 592, 593, 598
— — regius 599, 614
— unicolor 775
costaricensis, Atlapetes 218, 268
costaricensis, Mitrospingus 279, 285, 307
costaricensis, Ramphocelus 289, 311
costaricensis, Zonotrichia 168, 190, 224*, 239,
240
Cotingidae 394
Coturniculus 165, 196
— passerinus 246
Coturnix 222
— novaezelandiae 686
couchii, Aphelocoma 696, 702, 703, 731
Cractes 695, 709, 739
— sibiricus 740
Cracticidae 645, 654, 776
Cracticinae 654
Cracticini 677
Cracticus 654
— cassicus cassieus 654, 655, 659
— — hercules 656, 659
— destructor 659
— louisiadensis 776
— mentalis kempi 654, 659, 672*
— — mentalis 654, 659
— nigrogularis kalgoorli 656, 660
— — nigrogularis 654, 636, 660
— — picatus 656 (als Cratcicus), 659
— — robustus 660
— quoyi quoyi 654, 660
— — rufescens 660
— — spaldingi 660
— torquatus 626
— — argenteus 659, 659, 672*
— — cinereus 655, 659
— — leucopterus 655, 659
— — torquatus 654, 655, 656, 659
Cranioleuca vulpina alopecias 395
Craspedophora 673, 683, 691, 692
eraspedopterus, Euplectes 552, 587
cerassa, Aplonis 775
crassirostris, Ailuroedus 663, 664, 665, 669, 672*
crassirostris, Arachnothera 769
cerassirostris, Arremonops 266
crassirostris, Camarhynchus 213, 263
crassirostris, Carduelis 431, 444, 774
crassirostris, Corvus 696, 697, 728, 762
crassirostris, Diuca 202, 253
erassirostris, Euplectes 497*, 523, 593, 588
crassirostris, Heleia 99, 102, 1709
crassirostris, Manorina 142, 162
crassirostris, Oriolus 775
crassirostris, Oryzoborus 210, 260, 272*
crassirostris, Parus 74
crassirostris, Phylidonyris 159
crassirostris, Quiscalus 425
crassirostris, Rhamphocharis 768
crassirostris, Rhodopechys 447, 474
erassirostris, Video 360, 364
Crateieus (statt Cracticus) 656
cratitia, Meliphaga 126, 152
Creadion 145, 645
— carunculatus carunculatus 645, 648
— — rufusater 645, 648
Creatophora 591, 604
— carunculata 6/4
— cinerea 591, 594, 599, 604, 614
eretorum, Garrulus 735
Creurgops dentata 771
— verticalis 771
crex, Crex 654
Crex 655, 674
— crex 654
Criniger bres 77
erissalis, Pipilo 167, 214, 265
cerissalis, Strepera 658, 661
erissalis, Vermivora 324, 339
crissalis, Zosterops 107
cristata, Cyanoeitta 696, 697, 701, 712, 729
cristata, Eucometis 280, 285, 307
cristata, Galerida 391
cristata, Gubernatrix 218, 269, 387
eristata, Habia 772
cristata, Paroaria 269
cristata, Pseudoseisura 391
ceristatus, Coryphospingus 269
cristatus, Parus 6—8, /8, 19, 27, 32*, 36, 205
eristatus, Tachyphonus 279, 280, 282, 285, 286,
307
ceristatellus, Acridotheres 592, 602, 621
eristatellus, Cyanocorax 696, 705, 733
Crithagra 461
erocatus, Ploceus 523, 538, 539, 573, 574
crocea, Carduelis 467
crocopygius, Serinus 433, 439, 461
ceruciana, Dendroica 322, 325, 340
51 Oologie, 40. Lieferung
801
eruentata, Myzomela 769
cruentatum, Dicaeum 42, 44, 47
cruentus, Oriolus 626, 629
eruentus, Rhodospingus 210, 219, 269
Crypsirhina 695
Crypsirina 695, 697
— cucullata 697, 714, 744
— temia 696, 697, 714, 744
— varlıans 744
cryptoleucus, Corvus 725, 736*, 759
Cryptospiza jacksoni 494, 774
— reichenowi australis 490, 494
— salvadoriü 487
— — kilimensis 488, 494
— shelleyi 774
Cuculiden 117, 682
cucullata, Carduelis 430, 431, 434, 443, 465, 492*
cucullata, Crypsirina 697, 714, 744
cucullata, Cyanolyca 776
cucullata, Geothlypis 346
cucullata, Lonchura 487, 488, 490, 491, 509, 527
cucullata, Paroaria 269
cueullata, Spermestes 509
cucullata, Tangara 279, 280, 298, 299, 304*, 318
cucullata, Urocissa 697, 698, 710, 740
cucullatus, Coryphospingus 219, 269
eucullatus, Ieterus 370— 372, 379, 380, 401, 402,
415
cucullatus, Ploceus 497*, 519—521,
538-540, 343, 544-546, 578, 579, 767
Cuculus 393, 603
— canorus 394, 399, 407, 528, 552, 727
— — canorus 393, 404, 468
— — telephonus 226
— clamosus 603
— — gabonensis 603
— micropterus 603
— pallidus 117, 124
— sparverioides 53
eulicivorus, Basileuterus 322, 335, 349, 352*
ceulminator, Lamprotornis 596, 611
culminatus, Corvus 698, 724, 757
cuprea, Nectarinia 51, 52 (einmal errore cupra),
53, 59, 71, 73, 91, 96#
cupreocauda, Lamprotornis 775
ceupreonitens, Nectarinia 73, 93
curaeus, Quraeus 387, 422
Curaeus 369, 370, 405
— curaeus curaeus 387, 422
— — reynoldsi 387, £22
— forbesi 774
curasoensis, Icterus 2/3
curruca, Sylvia 77, 299, 325, 380, 408, 625
curtatus, Pipilo 264
curvirostra, Loxia 356, 430, 431, 433, 441, 448,
450, 451, 452, 181, 482, 492*
cyana, Cyanopica 696, 697, 700, 712, 720*, 741,
742
802
cyanea, Aphelocoma 731
cyanea, Chlorophonia 316
cyanea, Coereba 300, 319
cyanea, Cyanocompsa 276
cyanea, Diglossa 302, 320
cyanea, Passerina 168, 223, 277, 394, 404
Cyanerpes 201, 278—280, 300— 302, 321
— caeruleus 300, 301, 320
— — caeruleus 282, 300, 319
— — longirostris 300, 304*, 319
— cyaneus 281, 300, 301, 320
— — carneipes 2832, 300,319
— — eyaneus 282, 300,301, 320
— — ramsdeni 319
— Jueidus isthmicus 300, 319
— nitidus 773
cyanescens, Tangara 299, 319
cyaneus, Cyanerpes 281, 282, 300, 301, 319,
320
cyaneus, Malurus 140
eyanicollis, Calliste 319
cyanicollis, Tangara 279, 280, 299, 319
cyanicterus, Cyanicterus 281, 293, 304*, 314
Cyanicterus cyanicterus 281, 293, 304*, 314
Cyanistes 6, 23
cyaniventris, Lamprotornis 597, 611
cyanocephala, Eudynamys 117, 135
cyanocephala, Gymnorhinus 700, 729
cyanocephala, Nectarinia 52, (als Cinnyris
ceyanocephalus) 83
cyanocephala, Tangara 279, 296, 297, 317
cyanocephala, Thraupis 279, 280, 292, 304*, 313
cyanocephala, Uraeginthus 501, 528
Cyanocephalus 695, 700, 729
cyanocephalus, Cinnyris (jetzt Nectarinia) 83
cyanocephalus, Euphagus 383, 391, 426
Cyanocitta 697, 700
— coronata 730
— cristata 696, 697, 712
— — bromia 698, 700, 729
— — cristata 701, 729
— — florincola 729
— diademata 730
— stelleri 695 — 697
— — annectens 701, 729
— — azteca 701, 720*, 730
— — carbonacea 701, 730
— — frontalis 701, 729
— — macrolopha 701, 730
— — ridgwayi 701, 730
— — stelleri 701, 729
Cyanocompsa 165, 222, 223, 276, 521
— — ceyanea 276
— cyanoides caerulescens 275
Cyanocorax 408, 695, 697, 703, 706
— affinis 694
— — 698, 705, 733
— caeruleus 695, 696, 704, 720*, 732
Cyanocorax cayanus 407, 776
— chilensis 704, 705, 732
— chrysops 696, 697, 709
— — chrysops 703, 705, 707, 733
— cristatellus 696, 705, 733
— — cyanopogon 705, 733
— cyanoleuca 733
— ceyanomelas 695, 696, 704, 705, 720*, 732
— dickeyi 696, 706, 733
— heilprini 776
— mystacalis 697, 698,
— violaceus 696, 705
— — violaceus 705, 732
— yncas 405, 408, 695, 706, 714
— — centralis 706, 734
— — ceyanodorsalis 707, 734
— — galeatus 706, 734
— — glaucescens 706, 733
— — guatimalensis 698, 707, 734
— — Juxuosus 706, 733
— — maya 706, 734
— — vividus 706, 733
cyanodorsalis, Cyanocorax 704, 734
cyanofrons, Erythrura 507
cyanogenys, Psilorhinus 707, 734
cyanoides, Cyanocompsa 275
cyanoides, Passerina 166—168, 222, 275, 276
cyanolaema, Cyanomitra 84
cyanolaema, Nectarinia 51, 53, 38, 84
cyanoleuca, Cyanocorax 733
cyanoleuca, Grallina 646, 648, 672*
Cyanolyca 695, 697
— argentigula 776
— cucullata 776
— mirabilis 776
— nana 696, 697, 708, 731
— pulchra 776
— pumilo 776
— viridieyana 695, 697, 703, 731
cyanomelas, Cyanocorax 695, 696, 704, 705,
720*, 732
Cyanomitra 82, 83, 86
— cyanolaema 84
Cyanopica 657, 695, 696, 709
— cyana cooki 696, 697, 700, 706, 712, 720*,
741
— — cyana 696, 697, 700, 712, 720*, 742
— — japonica 696, 697, 712, 742
— — kansuensis 697, 712, 742
— — koreensis 712, 742
— — pallescens 697, 712, 742
— — stegmanni 696, 697, 712, 742
— — swinhoei 697, 712, 742
cyanopogon, Cyanocorax 705, 733
Cyanopolius 695, 742
cyanoptera, Tangara 281, 299, 319
cyanoptera, Thraupis 281, 292, 313, 772
cyanopterus, Artamus 116, 123, 649, 651, 653
706, 733
eyanopus, Agelaius 175
Cyanospiza 223, 277
eyanotis, Aphelocoma 702, 731
eyanotis, Entomyzon 116, 118, 119, 131, 132,
134, 156, 160*
eyanotis, Tangara 772
cyanoventris, Tangara 772
eyanovirens, Erythrura 508
cyanus, Parus 6, 7, 23, 24
cyanus, Peneothello 682
Cyclarhinae 359
Cyclarhis 359
— gujanensis cearensis 360, 363
— — flavipectus 352*, 360, 363
— — gujanensis 359, 360, 363
— — parvus 360, 363
— — subflavescens 360, :363
— — viridis 352, 359, 360, 363
— nigrirostris 773
cypriotes, Parus 18
Cypsnagra 280, 281
— hirundinacea hirundinacea 283, 305
— ruficollis 305
Cyrtostomus 86, 87
— pectoralis 87
- dabbeneni, Aimophila 199, 250
dabryii, Aethopyga 75, 95
Dacnidinae 278, 281, 301
Dacnidinen 279
Dacnis 278— 280, 398
— albiventris 773
— berlepschi 773
— cayana 280
— — callaina 280, 299, 319
— — cayana 282, 299, 319, 432*
— — paraguayensis 299, 766
— flaviventer 773
— hartlaubi 773
— lineata 773
— nigripes 773
— venusta 773
— viguiri 773
daitoensis, Zosterops 103
dalhousiae, Psarisomus 631
damarensis, Anthoscopus 7/2
damarensis, Estrilda 487, 503
damarensis, Parus 19
damarensis, Passer 523, 533, 565
damarensis, Serinus 439, 260
damarensis, Uraeginthus 500
Daphoenositta miranda 768
. Daphoenosittinae 25
darwinii, Thraupis 282, 293, 314
dauuricus, Corvus 696, 698, 719, 736*, 751
davidi, Parus 768
dawsoni, Leucostiete 446, 473
dawsoni, Meliphaga 125, 157, 160*
51*
803
dayakanum, Dicaeum 33*, 44, 46
debilis, Passer 583
decolorata, Emberiza 226
decora, Paradisaea 776
decorsei, Nectarinia 70, 91
decumanus, Cacicus 410
decumanus, Psarocolius 364, 370, 372, 373, 375,
376, 382, 400*, 404—409, 410, 432
decurtatus, Hylophilus 368
defilippii, Pezites 384, 420
degener, Parus 764
dehrae, Sturnus 618
delacouri, Euplectes 555, 590
delamerei, Estrilda 488, 490, 504, 526, 527
delamerei, Euplectes 555, 590
delatrii, Tachyphonus 772
delattrii, Basileuterus 335, 349
delicata, Dendroica 326, 342, 352*
Delothraupis castaneoventris 772
deminuta, Nectarinia 84
Dendroeitta 713, 714
— baileyi 697, 714, 744
— formosae 696, 697, 713
— — assimilis 713, 743
— — formosae 696, 713, 743
— — himalayensis 636, 696, 698, 699, 713, 714,
743
— — occeidentalis 698, 713, 743
— — sinica 718, 743
— frontalis 713, 714, 720*, 744
— leucogastra 696— 698, 713, 744
— oceipitalis cinerascens 696, 713, 714, 743
— rufa 743
— sinensis 7/43
— vagabunda 696, 713
— — bristoli 698, 712, 742
— — pallida 698, 712, 713, 720*, 742
— — parvula 712, 743
— — saturatior 713, 743
— — sclateri 713, 743
— — vagabunda 696— 698, 712, 714, 743
— — vernayi 712, 743
Dendrocolaptidae 394
Dendrocolaptiden 303
Dendroica 213, 321, 325, 329
— adelaidae delicata 326, 342, 352*
— angelae 773
— blackburniae 343
— breviunguis 344
— caerulescens cairnsi 326, 341
— — caerulescens 322, 326, 341
— canadensis 341
— castanea 322, 329, 341
— cerulea 322, 326, 341
— chrysoparia 322 (als chrysops), 327, 342
— coronata 322, 404
— — auduboni 328, 343
— — coronata 328, 343
804
Dendroica coronata nigrifrons 329, 343
— discolor discolor 322, 327, 342
— — paludicola 328, 342, 343
— dominica dominica 326, 342
— — stoddardi 326, 342
— fusca 322, 328, 343
— graciae graciae 322, 326, 342
— kirtlandii 329, 344, 401, 404
— maculosa 343
— magnolia 322, 328, 343
— nigrescens halseii 327, 342
— — nigrescens 322, 327, 342
— occidentalis 327, 342
— palmarum hypochrysea 329, 343
— — palmarum 322, 329, 343
— pensylvanica 322, 325, 341, 356, 404
— petechia 402 —404
— — aestiva 212, 322, 325, 326, 327, 340
— — aureola 325, 341
— — brewsteri 340
— — castaneiceps 325, 341
— — cruciana 322, 325, 340
— — eoa 325, 340
— — gundlachi 325, 340
— — melanoptera 325, 340
— — morcomi 325, 340
— — petechia 325, 341, 352”
— — rubiginosa 325, 340
— — sonorana 325, 340
— pharetra 326, 341
— pinus florida 326, 341
— — pinus 322, 326, 341
— pityophila 322, 326, 342
— plumbea 326, 341
— ruficapilla 340
— striata 322, 329, 344
— tigrina 322, 328, 343
— townsendi 322, 327, 342
— vigorsi 341
— virens 322, 327, 342
— vitellina 328
— — vitellina 343
waynei 342
Denkdrorhile 28, 34
deningeri, Lichmera 769
dentata, Creurgops 771
dentata, Petronia 536, 570
dentirostris, Scenopoeetes 665, 670
deserti, Serinus 430, 431, 433, 435, 438, 459
deserticola, Amphispiza 198, 249
desmaresti, Tangara 297, 317
desmarestü, Calliste 318
destructor, Cracticus 659
devronis, Sporophila 209, 259
diaconus, Thraupis 312
diadema, Catamblyrhynchus 771
diadema, Cyanocitta 730
diadematus, Euplectes 518, 520, 552, 586
diadematus, Stephanophorus 293, 304*, 314
Diatropura 518, 555, 590
— progne ansorgei 590
Dicaeidae 42, 43, 768
Dicaeiden 113
Dicaeum 42
— aeneum 768
— aeruginosum 768
— agile 42, 43, 768
— — agile 33*, 42, 43, 45
_ oderkm 48, 45
— — zeylonicum 43, 45
— annae 768
— anthonyi 768
— aureolimbatum 42
— — aureolimbatum 44, 45
— australe haematostictum 42, 44, 46
— bicolor 768
— celebicum 42
— — celebicum 44, 47
— chrysorrheum 42
— — chrysochlore 45
— — intensum 45, 46
— concolor borneanum 47
— — concolor 42, 46
— — olivaceum 42, 46
— — subflavum 46
— cruentatum cruentatum 42, 44, 47
— — ignitum 47
— — nigrimentum 47
— — siamense 47
— erythrorhynchos ceylonense 46
— — erythrorhynchos 42, (als erythrorhyn-
chum) 46
— erythrothorax schistaceiceps 47
— everetti 768
— eximium layardorum 42, 44, 47
— flammeum 48
— hirundinaceum hirundinaceum 47
— — ignicolle 47
— hypoleucum 768
— igniferum 768
— ignipectus ignipectus 42, 47
— maugei 768
— melanoxanthus 33*, 42, 43, 45
— monticolum 768
— nehrkorni 768
— nigrilore 768
— pectorale violaceum 47
— proprium 768
— pygmaeum 768
— quadricolor 768
— retrocinetum 768
— rubrocoronatum 42, 43, 45, 47
— sanguinolentum 4
— — ablutum 47
— — sanguinolentum 47
— trigonostigma 42, 44
Dicaeum trigonostigma cinereigulare 46
— — dayakanum 33*, 44, 46
— — flavielunis 4, 46
— — rubropygium 44, 46
— — trigonostigma 4, 46
— — xanthopygium 44, 46
— tristrami 768
— trochileum trochileum 48
— vincens 42, 48, 45
— vulneratum 768
dichroa, Aplonis 594, 607, 608*
dichromata, Myzomela 122, 149
dichrous, Parus 6, 79
dickeyi, Cyanocorax 696, 706, 733
dierocephalus, Ploceus 775
Dieruridae 114, 631, 675, 775
Dieruriden 636
Dieruropsis 631, 636
Dierurus 626, 631, 632, 633, 636, 637
adsimilis 634
— adsimilis 632, 633, 634, 639
— apivorus 684
— atactus 634, 639
— divaricatus 633, 634, 639
— fugax 639
— lugubris 639
aeneus 631
— aeneus 632, 633, 685, 642
— braunianus 608*, 633, 636, 642
afer 639
aldabranus 633, 634, 640
andamanensis 637
— andamanensis 632, 637, 644
annectans 631 — 634, 635, 636, 642
atripennis 632, 633, 634, 639
*balicassius 775
caerulescens 632, 633
— caerulescens 633, 635, 642
— insularis 635, 642
— leucopygialis 635, 642
forficatus 632, 633, 633/4
— forficatus 634, 640
fuseipennis 775
hottentottus 632, 638
— atrocaeruleus 632, 633, 636, 642
— bimaensis 637, 643
— borneensis 632, 633, 637, 643
— bracteatus 632, 636, 637, 643
— brevirostris 632, 635, 637, 643
— carbonarius 632, 633, 636, 643
— hottentottus 632, 633, 637, 643
— laemostictus 632, 633, 636, 637, 643
— leucops 637, 643
leucophaeus 632, 633, 635, 636
— disturbans 641
— hopwoodi 635, 641
— innexus 641
— leucogenis 641
805
Dierurus leucophaeus leucophaeus 633, 641
— — longicaudatus 633, 635, 641
— — mouhoti 641
— — nigrescens 641
— — stevensi 64/7
— — stigmatops 685, 641
— lophorinus 644
— ludwigii 633, 636
— — ludwigii 608*, 632, 634, 639
— — saturnus 634, 639
— — sharpei 632, 633, 639
— — tephrogaster 634, 639
— macrocercus 632— 636
— — albirietus 633, 684, 640
— — cathoecus 633, 634, 640
— — harterti 685, 640
— — javanus 635, 641
— — macrocercus 633, 634, 640
— — minor 634, 640
— — thai 634, 640
— megarhynchus 775
— montanus 775
— paradiseus 114, 632, 638
— — ceylonicus 632, 633, 638, 644
— — formosus 632, 637, 638, 644
— — grandis 608*, 632, 633, 638, 644
— — lophorinus 632, 638, 644
— — malabaricus 644
— — otiosus 632, 688, 644
— — paradiseus 632, 633, 688, 644
— — platurus 632, 633, 637, 644
— — rangoonensis 632, 638, 644
— remifer 632, 633, 635, 637
— — remifer 636, 642
— — tectirostris 636, 642
— rhemifer 114
— waldenii 632, 634, 640
Diederik 540
diemenensis, Philemon 770
diffieilis, Geospiza 262, 764, 765
diffusus, Oriolus 625, 628
diffusus, Passer 523, 565, 566
digitalis, Pyrrhocorax 698, 718, 750
Diglossa 278, 280, 302
— albilatera albilatera 302, 320
— baritula 302
— — dorbygnyi 302, 320
— — montana 302, 320
— — plumbea 282, 302, 320
— caerulescens saturata 302, 320
— carbonaria gloriosa 302, 320
— cyanea cyanea 302, 320
— duidae 773
— glauca 773
— indigotica 773
— lafresnayiüi 773
— major 773
— personata 320
806
Diglossa sittoides 320 Donacola 487, 514, 515
— venezuelensis 773 — nigriceps 515
Diglossopsis 278, 320 Donacospiza 165— 167
Dilophus 599, 614 — albifrons 202, 253
dilutus, Passer 534, 567 donaldsoni, Plocepasser 530, 560
dimidiatus, Ramphocelus 281, 289, 310 donaldsoni, Serinus 438, 460
dinemelli, Dinemellia 496*, 529, 559 dorbignii, Arremon 266
Dinemellia 517, 519, 520, 522, 535 dorbignyi, Diglossa 302, 320
— dinemelli boehmi 529, 559 dorsalis, Ammodramus 247
— — dinemelli 496*, 529, 559 dorsalis, Gymnorhina 656, 658, 661, 672*
diops, Ptilotis 154 dorsalis, Junco 192, 193, 194, 245
Diphyllodes 676, 678 dorsalis, Phrygilus 770
— magnificus hunsteini 677, 686, 693 dorsalis, Pseudonigrita 531, 560
— respublica 776 dorsalis, Ramphocelus 311
discolor, Certhia 36, 37, 40 dorsomaculatus, Ploceus 775
discolor, Dendroica 322, 327, 328, 342, 343 dorsostriatus, Serinus 439, 460
Dissemuroides 632, 637, 644 dowii, Tangara 772
Dissemurulus 632, 638, 644 Drepanididae 43, 355, 773
Dissemurus 114, 631, 632, 637, 638, 644 Drepanis 355
dissita, Amadina 490, 516 — funerea 773 ei
disturbans, Dicrurus 641 — paeifica 773
diuca, Diuca 202, 253, 399 — vestiaria 357
Diuca 166, 200, 202, 219, 398, 521 Drepanoplectes 518, 555, 390
— diuca 399 Drepanorhynchus 50, 74, 94
— — crassirostris 202, 253 Drepanornis 675, 676, 678, 683
— — diuca 202, 253 — albertisi 689
— — minor 202, 253 — — cervinicauda 684, 692
— speculifera speculifera 202, 253 — — geisleri 677, 684, 692
divaricatus, Dicrurus 633, 634, 639 — bruijnii 776
diversus, Vireo 366 Dreptes 83
Dives 408 dresseri, Parus 1/4
— atroviolacea 370 (als atroviolaceus), 388, Dromas ardeola 117
423 Drongos 3, 608*, 631
— dives 370, 371, 405 Drosseln 143, 381, 383, 540, 598, 684
— — dives 371, 388, 423 dubia, Geospiza 262
— — warszewiczi 388, 423 dubium, Seissirostrum 591, 603, 622
dives, Dives 370, 371, 388, 405, 423 dubius, Acanthorhynchus 141, 160*, 161, 162
docilis, Pyrrhocorax 696, 697/8, 749 dubius, Carpodacus 479
dohertyi, Lophozosterops 100, 102, 109 duboisi, Ploceus 519, 546, 549, 580
Dohlen 699, 701, 717, 719 Dubusia taeniata 772
dolei, Palmeria 773 ducalis, Astrapia 684, 693
Dolichonychinae 369 dugesi, Basileuterus 335, 349
Dolichonyx 370 duidae, Diglossa 773
— oryzivorus 194, 371, 409, 429, 432* - dumerili, Anthornis 143, 163
Dolospingus fringilloides 770 dumontii, Mino 592, 594, 602
domestica, Progne 303 dussumieri, Nectarinia 52, 64, 86
domesticus, Passer 54, 61, 63, 70, 73, 74, 202, duyvenbodei, Aethopyga 769
292, 300, 399, 402, 496*, 514—521, 523, 529, dybowskii, Euschistospiza 774
531, 532 —536, 548, 552, 561-563 dybowskii, Passer 534, 567
dominica, Dendroica 326, 342
dominicana, Coereba 353 edithae, Corvus 726, 759
dominicana, Loxigilla 212, 262 Edolius 631, 634, 640
dominicana, Paroaria 167, 269 edwardsi, Buthraupis 772
dominicensis, Carduelis 774 edwardsii, Carpodacus 433 (als edwardsi), 449,
dominicensis, Icterus 370, 371, 378, 379, 381, 478, 174
415, 416 efatensis, Zosterops 99, 107
dominicensis, Sindalis 280, 289, 311 egregia, Zosterops 100, 104
Dominikanerwitwe 526 Eichelhäher 707, 708
eichhorni, Myzomela 769
eichhorni, Philemon 770
eidos, Parus 7/6
elachior, Anthreptes 55, 81
Elaenia 293, 359, 360
— flavogaster 360, (als flavigaster) 396
Elaeocerthia 50, 83, 89
elaeoprorus, Atlapetes 217, 267
elegans, Emberiza 175, 181, 231
elegans, Parula 324, 340, 352*
elegans, Parus 18
elegantissima, Euphonia 279, 295, 315
elegantula, Emberiza 181, 231
elgsonensis, Onychognathus 591, 595, 609
elisabeth, Lamprotornis 592, 597, 611
ellioti, Philemon 136, 157
elsae, Atlapetes 217, 218, 268
Elster 529, 706, 709-711, 715— 717, 723, 724
elwesi, Zosterops 104
Emberiza 51, 52, 165—167, 169,
183, 184, 210, 213, 279, 636, 667
— affınis 770
— aureola 166, 180, 183, 187, 209
— — aureola 168, 181, 231
— — ornata 168, 182, 224*, 231
— — suschkini 181, 231
— bruniceps 168, 183, 233
— buchanani 173—175
— — buchanani 168, 174, 227
— — neobscura 174, 227
— — obscura 227
— caesia 176, 181, 185, 228
— calandra 146, 165—167, 169, 170, 171, 176,
179, 224*, 225, 286, 389, 409, 453
— — thanneri 169
— cabanisi cabanisi 168, 182, 232
— — cognominata 182, 183, 232
— — major 232
— — orientalis 167, 183, 224*, 232
— canneti 234
— capensis 176
— — basutoensis 178, 229
— — capensis 168, 178, 230
— — cinnamomea 168, 178, 229
— — limpopoensis 178, 229
— — reidi 229
— chrysophrys 180, 231
— cia 54, 166, 170, 171, 172, 173, 174, 177,
182, 185, 198
— — africana 172, 224*, 226
— — cia 172, 173, 226
— — decolorata 226
— — godlewskii 172, 173, 226
— — khamensis 173, 226
— — nanshanica 226
— — par 168, 172, 173, 226
— — stracheyi 168, 172, 173, 226
— — yunnanensis 173, 226
170, 180,
807
Emberiza cineracea cineracea 175, 181, 227
— einerea 227
— cioides 170, 174
— — castaneiceps 173, 227
— — cioides 168, 173, 227
— — ciopsis 178, 175, 227
— — tangutorum 173, 227
— — tarbagataica 173, 226
— — weigoldi 178, 227
— cirlus 166, 169, 170, 172, 175, 176, 185,
198, 203, 636
— — ceirlus 167, 176, 228
— — nigrostriata 176, 224”, 228
— ceitrinella 166, 170—172, 174— 176, 179, 185,
201, 372, 390, 678
— — caliginosa 170, 225
— — citrinella 167, 170, 225
— — erythrogenys 171, 225
— — nebulosa 170, 225 |
— elegans 175
— — elegans 181, 231
— — elegantula 181, 231
— — ticehursti 181, 231
— flaviventris 166, 170, 182, 183, 440, 527
— — flavigaster 182, 232
— — flaviventris 182, 232
— — kalaharica 168, 182%, 232
— fucata 166, 171, 178—180, 183, 184
— — arcuata 168, 179, 230
— — fucata 179, 230
— — kuatunensis 179, 230
— — laubmanni 179, 230
— ieterica 233
— impetuani 168, 177, 178, 229
— hortulana 166, 168, 174, 175, 176, 179 bis
181, 184, 201, 228, 383, 521
— huttoni 227
— jankowskii 174, 227
— koslowi 776
— leucocephala 183, 776
— — fronto 172, 225
— — leucocephala 167, 171, 225
— luteola 233
— major 232
— melanocephala 167, 175, 183, 184, 200, 224*,
232, 521
— melanops 233
— pallasi pallasi 168, 185, 233
— — polaris 185, 233
— poliopleura 182, 231
— pusilla 166—168, 179, 230
— rustica 166, 179, 184
— — Jatifaseia 168, 181, 231
— — rustiea 168, 180, 224*, 231
— rutila 185, 232
— schoeniclus 53, 165, 166, 178— 181, 185, 186,
298, 390
— — canneti 234
808
Emberiza schoeniclus intermedia 234
— — pallidior 234
— — passerina 234
— — pyrrhulina 168, 224*, 234
— — pyrrhuloides 168, 234
— — reiseri 235
— — schoeniclus 168, 224*, 234
— — witherbyi 185, 186, 234
— socotrana 770
Emberizidae 165, 168, 189, 213, 278, 398, 401,
403, 430, 431, 434, 449, 517, 521, 524, 764,
765, 770
Emberiziden 54, 56, 78, 166, 168-176, 183 bis
185, 200, 201, 393, 430, 453
Emberizinae 165, 166
Emberizinen 291
Emberizoides 166, 398
— herbicola apurensis 256
— — herbicola 205, 256
— — sphenurus 167, 205, 256
— macrurus 256
— ypsiranganus 770
Embernagra 166, 298
— longicauda 770
— platensis 205, 221
— — olivascens 205, 256, 272*
— — platensis 205, 256
Emblema bella 487, 490, 505
— guttata 487, 490, 506
— oculata 487, 506
— pieta 490, 505
emiliae, Chlorocharis 769
emiliae, Nigrita 487, 492
emini, Ploceus 520, 537, 538, 572, 573
emini, Sporopipes 523, 587, 571
eminibey, Passer 516, 520, 534, 568
Empidonax traillii 404
enca, Corvus 696, 698, 721, 736*, 752
endemion, Serinus 440, 461, 462
enigmaticus, Passer 532
Enodes 591
— erythrophrys 775
Entenvögel 168
Entomophila 140, 161
— leucomelas 750
Entomyzon 115
— cyanotis 116, 118, 132, 134
— — albipennis 119, 132, 156
— — ceyanotis 131, 132, 156, 160*
— — harterti 119, 131, 132, 156
enucleator, Pinicola 433, 450, 480, 492*
eoa, Dendroica 325, 340
Eophona 430, 453, 484, 485
eos, Carpodacus 774
epauletta, Pyrrhoplectes 774
Ephthianura s. Epthianura
Epimachus 676, 678
— fastosus 776
Epimachus meyeri bloodi 677, 684, 692
— — bloodi x Astrapia mayeri 684, 692
— — meyeri 684, 692
episcopus, Thraupis 279—281, 290, 291, 292,
304*, 312
epops, Upupa 708
Epthianura 113
— albifrons 140
eques, Euplectes 554, 589
eques, Myzomela 119, 121, 148
Erdschwalbe 303
eremoeca, Aimophila 199, 250
Eremophila alpestris 74, 194
Ergaticus 335
— ruber 334
— — 347
— versicolor 334, 347
ericrypta, Zonotrichia 239
Erithacus rubecula 114, 192, 196, 206, 383, 446,
452, 649 |
erlangeri, Estrilda 502
erlangeri, Nectarinia 73, 93
erythaca, Pyrrhula 431, 433, 452, 483
Erythrina 447, 478, 479
erythrinus, Carpodacus 433, 447, 448, 449, 452
(als erythina), 476, 492*, 543
erythrocephala, Amadina 490, 516
erythrocephala, Foudia 585
erythrocephala, Myzomela 119, 121, 148
erythrocephala, Pyrrhula 431, 433, 451, 452,
482
erythrocephalus, Aegithalos 10
erythrocerca, Nectarinia 51, 53, 73, 93
erythroceria, Nectarinia 93
erythrogaster, Malimbus 775
erythrogenys, Emberiza 171, 225
erythromelaena, Myzomela 149
erythromelas, Myzomela 119, 122, 149
erythromelas, Periporphyrus 771
“ erythronotos, Estrilda 488, 490, 504
erythronotus, Phrygilus 770
erythrophrys, Enodes 775
erythrophrys, Poospiza 202, 253
erythrophthalmus, Pipilo 166, 167, 213, 214,
215, 223, 263 (einmal als erythrophthala- _
mus), 264, 403, 404
erythropleura, Ptiloprora 770
erythropleura, Zosterops 100, 103
erythrops, Climacteris 37, 41
erythrops, Quelea 519, 550, 584
erythroptera, Mirafra 169
Erythropygia galactotes familiaris 402
— — galactotes 402
erythropygius, Sturnus 592, 600, 615
erythrorhamphus, Pyrrhocorax 717, 718, 749
erythrorhyncha, Urocissa 696, 697, 710, 740
erythrorhynchos, Dicaeum 42 (als Dicaeum
erythrorhynchum), 46
erythrorhynchus, Buphagus 603, 604, 622
Erythrospiza 430, 474
erythrothorax, Dicaeum 47
Erythrura 487
— coloria 774
— cyanovirens cyanovirens 508
— — pealii 508
— — regia 508
— hyperythra hyperythra 488, 507
— kleinsehmidti 487 —489, 508
— papuana 774
— prasina prasina 490, 507
— psittacea 508
— trichroa clara 488, 508
— — eyanofrons 507
— — pelewensis 487, 508
— — sigillifera 507
— — trichroa 507
— trieolor 774
— viridifacies 774
Erzrabe 728
eschatosus, Pinicola 450, 480:
espinachi, Icterus 214
estherae, Serinus 774
Estrilda 487 —489, 500, 504, 505
— astrild 488, 526, 527
— — adesma 490, 502
— — astrild 488, 491, 492*, 503
— — cavendishi 490, 503, 527
— — damarensis 487, 503
— — erlangeri 502
— — jagoensis 503
— — massalca 488, 502
— — minor 503
— — nyansae 488, 502
— — nyassae 503
— — occeidentalis 488, 502
— — peasei 502
— — tenebridorsa 488, 491, 503, 525, 528
— atricapilla atricapilla 503
— — graueri 503
— — keniensis 503
— caerulescens 501
— charmosyna 489, 526, 774
— cinerea 502
— erythronotos 489, 526
— — delamerei 488, 490, 504
— — erythronotos 490, 504
— — soligena 504
— melanotis 527
— — kilimensis 490, 501
— — melanotis 502
- — — quartinia 501
— melpoda 527
— — melpoda 490, 493, 502
— nigriloris 774
— nonnula nonnula 503
— paludicola 526
809
Estrilda paludicola benguellensis 489, 502
— perreini incana 490, 501
— — perreini 501
— — poliogastra 501
— rhodopyga 526
— — centralis 487, 502
— rufibarba 774
— subflava clarkei (recte Amandava statt E.)
527
— thomensis 774
— troglodytes 487/8, 490, 502, 527
Estrildae 487, 489
Estrildidae 431, 434, 441, 487, 489, 490, 517,
521, 524, 527, 774
Estrildiden 488
Estrildinae 517
ethelae, Meliphaga 125, 152
euchlorus, Passer 534, 568
Eucometis 278—281
— penicillata cristata 280, 285, 307
— — penicillata 281, 285, 307
— — stietothorax 280, 281, 285, 307
Eucorystes 411
eucosma, Charitospiza 771
Eudrepanis 95
Eudynamys 719
— scolopacea 682 (als scolopaceus), 710, 715,
719
— — cyanocephala 117, 135
— — melanorhyncha 602
— — salvadorii 117, 135
— — scolopacea 736*
Euetheia 211 x
Euethia 165, 211, 261
Eulabes 591, 602, 603, 621, 622
Eulabetidae 591, 645
Euneornis 278, 280, 302
— campestris 302, 320
Euodice 509
Euphagus 370, 371, 409
— carolinus 187, 391
— — carolinus 371, 390, 426, 432*
— — nigrans 391, 426
— cyanocephalus 383, 391, 426
Euphonia 278, 279 (als Thraupis), 280, 293, 294,
295, 878
— affinis 279
— — affınis 281, 294, 314
— anneae 772
— aurea violaceicollis 314
— chalybea 294, 295, 766
— chlorotica 279, 293
— — chlorotica 294, 314
— chrysopasta 772
— coneinna 772
— finschi 772
— fulvierissa 772
— gouldi praetermissa 279, 295, 316
810
Euphonia hirundinacea 279 (Thraupis errore)
— gnatho 279, 295, 304*, 315
— hirundinacea 282, 294, 295, 315
— lauta 315
imitans 295, 316
jamaica 279, 294, 314
laniirostris laniirostris 295, 315
luteicapilla 279 (einmal als Thraupis), 281,
282, 294, 314
mesochrysa 772
minuta humilis 295, 316
musica aureata 295, 316
— elegantissima 279, 295, 315
— flavifrons 295, 316
— intermedia 294, 316
— musica 279, 293, 316
— vincens 295, 315
nigricollis 294
pectoralis 296, 316
plumbea 772
rufiventris 293, 296, 316
saturata 772
trinitatis 279, 282, 294, 315
violacea 279, 293, 294
— aurantiücollis 294, 295, 296, 315
— lichtensteinii 315
— magna 315
— rodwayi 294, 315
— violacea 278, 282, 294, 315
xanthogaster 772
euphonia, Zonotrichia 168, 189, 237
Euplectes 488, 517—519, 522, 529, 552, 554
afer 518, 519, 522, 552
— afer 497*, 519, 522, 523, 551, 585
— intercedens 586
— ladoensis 520, 551, 586
— strictus 551, 586
— taha 359, 520, 523, 551, 586
albonotatus 520, 521, 553, 555
— albonotatus 554, 589
— asymmetrurus 554, 589
— eques 554, 589
— sassıi 554, 589
anomalus 520, 551, 552, 585
ardens 519, 520, 527, 542, 553
— ardens 523, 553, 554, 555. 590
— concolor 554, 589
— laticauda 554, 589
— suahelicus 555, 589
aureus 775
axillaris 519, 520, 552, 554
— axillaris 554, 588
— bocagei 558, 588
— phoeniceus 554, 588
— zanzibaricus 554, 588
capensis 520, 528, 535, 552, 555
— approximans 558, 588
— — capensis 553, 554, 588
Euplectes capensis crassirostris 497*, 523, 5583,
588
— — sabinjo 588
— — transvaalensis 588
— — xanthomelaena 588
— — xanthomelas 553, 587, 588
— — zambesiensis 588
— diadematus 518, 520, 552. 586
— gierowii 519, 520
— — ansorgei 552, 586
— hartlaubi 520, 553
— — hartlaubi 554, 589
— hordeaceus 518—520, 552
_ — ua den 952, 587
— — hordeaceus 552, 5 586
— — petiti 587
— — sylvaticus 586
— jacksoni 520, 521, 553, 395, 390
— macrourus 519, 520, 535. 553
— — macrourus 523, 554, 589
— — soror 589
— nigroventris 519, 520, 522, 552, 586
— orix 518, 519, 522, 528, 540, 550, 352
— — franeiscanus 523, 587
— — marwitzi 587
— — nigrifrons 587
— — orix 552, 587
— — pusillus 587
— — sundevalli 552, 587
— — turgidus 523, 552, 587
— progne 520, 521, 535, 553
— — delacouri 555, 590
— — delamerei 555, 590
— — progne 523, 555, 590
Euploceus 518, 540, 574, 575
eurhyncha, Passerina 276, 277
europaea, Sitta 25, 26, 27, 29, 32*
europaeus, Aegithalos 3, 9
europaeus, Caprimulgus 390
europoea, Pyrrhula 452, 483
eurycricotus, Zosterops 100, 110
Eurylaimidae 114, 631
Euscarthmus 294
Euschistospiza cinereovinacea graueri 495
— dybowskii 774
eusticta, Tangara 279, 298, 318
Euthlypis lachrymosa 334, 348
everetti, Arachnothera 52, 79, 98
everetti, Dicaeum 768
everetti, Zosterops 99, 105
evura, Spizella 198, 248
excelsus, Parus 20
excubitor, Lanius 391, 705, 716
exilipes, Acanthis 445, 470
exilis, Psaltria 70 s
eximia, Aethopyga 51, 52, 75, 95
eximia, Buthraupis 772
eximia, Rhodinoeichla 285, 306
eximium, Dicerurus 42, 44, 47.
explorator, Zosterops 99, 107
extimus, Parus 6, 16
extremiorientis, Emberiza 184, 233
faceta, Piranga 309
Fadenhopf 683
Fächerborstenrabe 727
falcifer, Pipilo 264
Faleinellus 684
faleinellus, Pipilo 264
faleirostris, Sporophila 770
falcklandii, Turdus 387
Falco 657
Falken 657
falkensteini, Nectarinia 67, 89
falklandicus, Pezites 385, 400*, 420
fallax, Glyeichaera\116, 119, 120, 147
fallax, Zonotrichia 237
familiare, Apalopteron 116, 130, 154
familiaris, Certhia 32*, 36, 37, 39, 40
familiaris, Erythropygia 402
familiaris, Prinia 302
familiaris, Zosterops 108
famosa, Nectarinia 51, 68, 69, 71, 73, 93, 94
fargoi, Coryphospingus 219, 269
faroensis, Sturnus 591, 600, 616
fasciata, Amadina 490/91, 516, 528, 531
fasciata, Chamaea 401
fasciata, Nectarinia 74, 94
fasciata, Neothraupis 771
fasciatus, Garrulus 720*, 734
fasciatus, Myiophobus 396
fasciatus, Ramsayornis 115, 117—119, 139,
159
fasciiventer, Parus 768
fasiogularis, Meliphaga 118, 119, 125, 751
fastosus, Epimachus 776
fastuosa, Tangara 772
feadensis, Aplonis 593, 607
Feldlerche 207, 649
Feldsperling 202, 207, 532, 534, 535
femininus, Carpodacus 449, 479
femininus, Ploceus 579
femoralis, Cinnyricinclus 775
fennorum, Pica 698, 714, 715, 744
ferghanensis, Carpodacus 433, 447, 476
ferghanensis, Parus 22
fergussonis, Oedistoma 120, 147
fernandinae, Teretistris 333, 346
ferreorostris, Chaunoproctus 774
ferrugineiventre, Conirostrum 336, 351, 773
ferrugineus, Pitohui 679, 680
ferrugineus, Scolecophagus 426
ferruginosa, Lonchura 513
festiva, Tangara 317
Ficedula hypoleuca 99
— — hypoleuca 763
811
ficedulina, Zosterops 769
Finken 189, 359, 430, 431, 434, 435, 450, 496*,
521
Finkenverwandte 524
Finkenvögel 3
finschi, Euphonia 772
finschi, Paradisaea 677, 688, 694
Finschia 3
fischeri, Nectarinia 58, 83
fischeri, Ploceus 546, 580
fischeri, Spreo 592, 598, 613
fischeri, Vidua 526, 557
fisherella, Zonotrichia 238
fisheri, Ammodramus 195, 245
flagrans, Aethopyga 769
flammaxillaris, Nectarinia 64, 65, 86, 87
tlammea, Acanthis 431, 433, 441, 444, 445, 461,
469, 470
flammeum, Dicaeum 48
flammeus, Asio 765
flammiceps, Cephalopyrus 5, 12, 13
flammiceps, Pyromelana 586
flammigerus, Ramphocelus 281, 311
flava, Meliphaga 115, 119, 124, 125, 128, 751
flava, Motacilla 180
flava, Piranga 288, 309, 401
flava, Zosterops 99, 100, 101, 106
flaveola, Coereba 322, 336, 337, 351, 352*, 353,
354, 356
flaveola, Siealis 201, 204, 255, 394, 534
flaveolus, Basileuterus 334, 348
flaveolus, Passer 523, 533, 564
flavescens, Meliphaga 119, 125, 151
flavicans, Foudia 551, 585
flavicans, Lichmera 769
flavicans, Prinia 526, 555
flaviceps, Atlapetes 771
flaviceps, Auriparus 5, 13, 32*
flaviceps, Loxioides 773
flaviceps, Ploceus 581
flaviceps, Zosterops 101, 108
flavielunis, Dicaeum 44, 46
flavicollis (recte flavinucha), Anisognathus 281
flavicollis, Hemithraupis 771
flavicollis, Meliphaga 127, 153
flavicollis, Petronia 568
flavierissa, Cacicus 375, 411
flavidiventris, Amandava 504
flavifrons, Amblyornis 776
flavifrons, Anthoscopus 768
flavifrons, Euphonia 295, 316
flavifrons, Vireo 359, 361, 366, 404
flavifrons, Zosterops 99, 107
flavigaster, Arachnothera 769
flavigaster, Elaenia 396
flavigaster, Emberiza 182, 232
flavigaster, Nectarinia 53, 63, 66, 87, 88, 96*
flavigastra, Nectarinia 88
812
flavigula, Manorina 116, 118, 119, 133, 140,
142, 143, 162, 163
flavigula, Ptilotis 153
flavigularis, Chlorospingus 771
flavilateralis, Zosterops 110
flavinucha, Compsocoma (jetzt Anisognathus
flavinuchus) 279
flavinuchus, Anisognathus 279 (als Compso-
coma), 281 (errore flavicollis), 293, 314
flavipectus, Cyclarhis 352*, 360, 363 A
flavipectus, Parus 6, 7, 24
flavipes, Hylophilus 368
flavipes, Platycichla 684
flavipes, Ploceus 775
flaviprymna, Lonchura 514
flavirictus, Meliphaga 769
flavirostris, Acanthis 431, 433, 437, 441, 444,
445, 470, 471
flavirostris, Arremon 216, 266
flavirostris, Chlorophonia 772
flavirostris, Urocissa 696 — 698, 710, 740
flavissima, Telespyza 357
flaviventer, Dacnis 772
flaviventer, Meliphaga 115—118, 128, 153
flaviventris, Emberiza 166, 168, 170, 182, 183,
a SA
flaviventris, Nectarinia 61, 85
flaviventris, Serinus 431, 433, 437 (als C.), 439,
455, 460 2
flaviventris, Sphecotheres 626, 630
flaviventris, Tachyphonus 286, 307, 427
flavivertex, Myioborus 773
flavivertex, Serinus 437, 457
flavocinetus, Oriolus 624, 627
flavopectus, Chlorospingus 284, 306
flavostriata, Aethopyga 77, 97
flavotineta, Lichmera 147
flavovelata, Geophlypis 773
flavovirens, Chlorospingus 771
flavoviridis, Vireo 359, 361, 366, 401
flavus, Xanthopsar 381, 417
Fleckenbaumläufer 37
Flötenwürger 654, 672*
florensis, Corvus 776
florida, Dendroica 326, 341
florida, Tangara 772
floridana, Aphelocoma 731
floridanus, Agelaius 383, 400*, 418
florıdanus, Cardinalis 371
florıdanus, Corvus 754
florincola, Cyanocitta 729
floweri, Sturnus 601, 618
fluviatilis, Emberiza 230
fluviatilis, Locustella 531
Fluvicola 359
— pica 396
fohkienensis, Parus 21
forbesi, Curaeus 774
forbesi, Lagonosticta 488, 495, 526
forbesi, Lonchura 514
forficata, Muscivora 401
forficatus, Dierurus 632, 633, 634, 640
Formicariidae 321, 394
formieivora, Myrmecoeichla 117
formosa, Amandava 487, 488, 504
formosa, Calocitta 696, 707, 735
formosa, Geothlypis 322, 332, 346
formosa, Sitta 28, 34
formosae, Dendrocitta 636, 696— 699, 713, 743
formosana, Lonchura 513
formosanus, Acridotheres 602, 621
formosus, Dieaeum 632, 637, 638, 644
fornsi, Teretistris 333, 347
forresti, Meliphaga 124, 151
forsteni, Oriolus 775
forsythi, Pyrrhocorax 750
fortirostris, Quiscalus 425
fortis, Agelaius 383, 417
fortis, Geospiza 213, 262
Foudia 518, 519 F
— bruante 775
— eminentissima aldabrana 523, 585
— — anjuanensis 551, 585
— — eminentissima 585
— erythrocephala 585
— flavicans 551, 585
— madagascariensis 551, 585
— rubra 551, 585
— sechellarum 775
Foulehaio carunculata 116
— — carunculata 129, 154
— — procerior 115, 129, 154
— provocator 116, 124, 129, 154
franciscae, Tangara 282 (errore franscicae),
299, 319, 878
franciscanus, Euplectes 523, 587
Francolinus 722
— lathami 132
franscicae (statt franciscae), Tangara 282
frantzii, Tangara 218, 282, 297, 317
fraseri, Anthreptes 768
fraseri, Basileuterus 773
fraseri, Oreomanes 773
frater, Onychognathus 775
fratercula, Geospiza 262
freethii, Himatione 355, 357
Fregilupus varius 775
frenata, Meliphaga 115, 118, 119, 129, 154
frenata, Nectarinia 50, 51, 53, 66, 71 (als Art),
87
fretensis, Lonchura 5/2
fretensis, Philemon 119, 134, 157
Fringilla 430, 431, 434, 601
— coelebs 57, 69, 179, 185, 197, 293, 431, 435,
448, 450, 452, 531
— — africana 484, 455
Fringilla coelebs balearica 435, #55
— — canariensis 434, 455
— — coelebs 433, 434, 455
— — gengleri 435, 456, 496*
— — koenigi 455
— — maderensis 434, 455
— — moreletti 434, 455
— — palmae 434, 455
— — solomkoi 435, 456
— — spodiogenys 434, 455
— — tintillon 455
— montifringilla 431, 433, 433, 456
— teydea 431, 434, 435
— — teydea 435, 456
Fringillaria 165, 176—178,
228, 229
— media 229
fringillarius, Molothrus 369, 391, 426
Fringillidae 165, 189, 193, 213, 401, 403, 430,
434, 449, 489, 517, 521, 524, 536, 765, 774
Fringilliden 170, 200, 201, 213, 393
Fringillinae 430
frinsillinus, Parus 20
fringillirostris, Acanthis 472
fringilloides, Dolospingus 770
fringilloides, Lonchura 490, 510, 527
frommi, Pyrenestes 488, 494
frommi, Serinus 439, 461
frontalis, Agelaius 383, £19
frontalis, Atlapetes 217, 218, 268
frontalis, Carpodacus 174, 448, 477
frontalis, Cyanocitta 701, 729
frontalis, Dendrocitta 713, 714, 720*, 744
frontalis, Hemispingus 771
frontalis, Lophozosterops 109
frontalis, Serinus 437, 458, 496*
frontalis, Sitta 26, 27, 34
frontalis, Sporophila 256
frontalis, Sporopipes 520, 523, 537, 571
fronto, Emberiza 172, 225
frugilegus, Corvus 645, 655, 696693,
221, 002,123 -.125, 11271, 133
frugivorus, Calyptophilus 279, 285, 306
fruticeti, Parus /3
fruticeti, Phrygilus 200, 252
fucata, Emberiza 166, 168, 171, 173, 179, 130,
183, 184, 230
fugax, Dierurus 639
fulgidus, Onychognathus 775
fulicata, Saxicoloides 169
fuliginosa, Geospiza 213, 262, 272*, 765
fuliginosa, Nectarinia 51, 59, 84, 96*
fuliginosa, Rhyacornis 210
fuliginosa, Strepera 658, 661
fuliginosa, Tiaris 211, 261
fuliginosa, Zonotrichia 188, 236
fuliginosus, Aegithalos 768
fuliginosus, Oreostruthus 774
182, 183, 185, 213,
719,
813
fuliginosus, Pytilus 166, 221, 273
fulvescens, Cardinalis 221, 273
fulvescens, Prunella 449
fulvicauda, Phaeothlypis 335, 350
fulviceps, Atlapetes 771
fulvierissa, Euphonia 772
fulvifrons, Glieiphila 759
fulvigula, Timeliopsis 769
fulvus, Lanio 771
fumifrons, Perisoreus 739
fumigata, Lonchura 510
fumigatus, Melipotes 116, 137, 158
fumosa, Tiaris 261
funerea, Drepanis 773
funerea, Vidua 523, 323, 529, 557
funereus, Parus 7, 20
furax, Saltator 167, 275
Furchenvogel 678
Furnariidae 394
Furnariiden 282
Furnarius 392, 398
— rufus 392, 397—399
fusca, Aplonis 594, 606
fusca, Certhidea 213, 263
fusca, Dendroica 322, 328, 343
fusca, Gerygone 120
fusca, Meliphaga 119, 125, 127, 151, 160*
fusca, Nectarinia 51, 53, 68, 73, 89
fuscans, Lonchura 491, 511
fuscata, Padda 774
fuscescens, Catharus 464
fuscicapilla, Zosterops 769
fuseicapillus, Corvus 721, 724, 752, 776
fuscicapillus, Philemon 770
fuscicauda, Habia 279, 288, 309
fuscipennis, Dierurus 775
fusconota, Nigrita 490, 492
fuscoolivaceus, Atlapetes 771
fuseus, Acridotheres 592, 594, 602, 608*, 620
fuscus, Artamus 649, 650, 651, 652
fuscus, Melidectes 770
fuscus, Pipilo 167, 213, 214, 215, 265, 272*
428, 432
gabonensis, Cuculus 603
gabonensis, Ortygospiza 774
gabonicus, Anthreptes 52, 533, 80
gadowi, Nectarinia 74, 94
galactotes, Cisticola 527
galactotes, Erythropygia 402
Galapagos-Finken 165, 321, 337
Galbula 303
galbula, Icterus 369—371, 379, 380, 381, 400*,
401, 402, £15
galbula, Ploceus 519—521, 542, 577
galeatus, Basilornis 775
galeatus, Cyanocorax 706, 734
Galeopsar 596, 610
814
galerieulatus, Platylophus 699, 729
Galerida 220, 382, 391
— cristata 391
galliae, Pica 715, 745
Gallierex cinerea 283
Gallinula 666
gallio, Zosterops 104
gambeli, Parus 7, 16
gambelii, Zonotrichia 241
garguensis, Anthreptes 55, 81, 96*
garleppi, Poospiza 770
garrula, Myzantha 162
Garrulax 593
Garrulus 382, 695, 709, 711, 712, 717
— glandarius 696, 697, 706, 707, 708, 714
— — atricapillus 737
— — bambergi 738
— — bispecularis 698, 708, 738
— — brandti 738
— — caspius 737
— — cervicalis 736
— — corsicanus 735
— — cretorum 735
— — fasciatus 720*, 735
— — glandarius 698, 735
— — glaszneri 736
— — hibernieus 735
— — hyrcanus 708, 737
— — japonicus 738
— — krynicki 736
— — Jeucotis 708, 738
— — melanocephalus 737
— 2 minor 708, 782
— — oatesi 708, 738
— — pekingensis 697, 738
— — persaturatus 738
— — rufitergum 735
— — sinensis 738
— — taivanus 697, 738
— — whitakeri 708, 737
— Jlanceolatus 696, 698, 708, 739
— lidthi 696, 708, 739
garrulus, Bombyecilla 174, 175
gayi, Phrygilus 191, 200, 201, 251
Geierrabe 728
geisleri, Drepanornis 677, 684, 692
geislerorum, Ailuroedus 664, 665, 669
Gelbhaubengärtner 665
Gelbkragenparadiesvogel 686
Gelbnackengoldvogel 666
Gelbrückenstirnvogel 405
Gelbschnabelkitta 710
Gelbschnabelmadenhacker 603
Gelbschwanzsichelhopf 684
genderuensis, Cinnyris 90
gengleri, Fringilla 435, 456, 496*
georgiana, Zonotrichia 168, 188, 189, 239
Geospiza 166, 212, 213, 355, 765
Geospiza albemarlei 262
— conirostris 763, 764
— — conirostris 167, 263
— — propinqua 263, 766
— difficilis acutirostris 262
— — diffieilis 262, 764, 765
— — septentrionalis 764, 765
— dubia 262
— fortis 213, 262
— fratercula 262
— fuliginosa 213, 270*, 765
— — fuliginosa 262
— — minor 262
— magnirostris 763, 764, 765
— scandens 262, 766
geospizensis, Phrygilus 201, 252
Geospizinae 165, 764
Geospizinen 765
Geothlypis 214, 332, 398, 399
— aequinoctialis 399
— — aequinoctialis 331, 346, 352*
— — velata 322, 332, 346
— agilis 322, 332, 346
— beldingi beldingi 331, 345
— — goldmani 331 (als heldingi), 345
— chiriquensis 331, 345
— cucullata 346
— flavovelata 773
— formosa 322, 332, 346
— heldingi (errore für beldingi) 331
— nelsoni 773
— philadelphia 322, 332, 346
— poliocephala poliocephala 332, 346
— rostrata 773
— semiflava bairdi 331, 345
— speciosa 773
— trichas 331, 403, 404
— — arizela 331 (als arizelae), 345
— — brachidactyla 345
— — ignota 331, 345
_— — melanops 331, 345
— — oceidentalis 331, 345, 428, 432
— — scirpicola 331, 345
— — sinuosa 331, 345
— — trichas 322, 331, 345
— — typhicola 331, 345
— tolmiei macgillivrayi 346
— — monticola 332, 346
— — tolmiei 332, 346
geraldtonensis, Meliphaga 127, 152
germanica, Pyrrhula 483
germanicus, Serinus 456
Gerygone fusca mastersi 120
gierowii, Euplectes 519, 520, 552, 586
gigolensis, Philemon 770
gilvus, Mimus 396
gilvus, Vireo 359, 367, 404
Gimpel 434, 448, 450
ginginianus, Acridotheres 592, 602, 620
gippslandica, Meliphaga 128
giraudii, Icterus 378, 413
Girlitze 434, 436, 437, 443, 453
githaginea, Rhodopechys 174, 181, 430, 431,
442, 446, 447, 451, 474
giulianettii, Meliphaga 115, 128, 153
slandarius, Clamator 709, 712, 715, 722, 725,
726
glandarius, Garrulus 696— 698, 707, 708, 714,
735
Glanzkrähe 721
Glanzmanucodia 679
Glanzstare 591, 593, 603, 645
glaszneri, Garrulus 736
glauca, Diglossa 773
glaucescens, Cyanocorax 706, 733
glaucocaerulea, Passerina 222, 275
glaucocolpa, Thraupis 292, 304*, 313
glaucogularis, Aegithalos 9
Glaueopis 645
glaucovirens, Lamprotornis 612
Glenargus 700, 729
Glieiphila 138, 159
— albifrons 139
— fulvifrons 159
— melanops 139
Glyeichaera fallax 116
— — fallax 119, 120, 147
Glyeiphila 138, 139, 159
gnatho, Euphonia 279 (als Thraupis), 295, 304*,
315
Gnorimopsar 370, 383, 387, 388, 398
— chopi chopi 387, 423, 432*
— — suleirostris 387, 122
godlewskii, Emberiza 172, 173, 226
godmani, Basileuterus 335, 319
goeldii, Sicalis 204, 255
goeringi, Hemispingus 771
golandi, Ploceus 775
Goldammer 170, 175, 185
goldmani, Geothlypis 331, 345
songonensis, Passer 565
goodfellowi, Lophozosterops 769
gordoni, Philemon 133
goslingi, Emberiza 178, 229
goughensis, Rowettia 765
gouldi, Euphonia 279, 295, 316
gouldi, Phonygammus 682, 691
gouldi, Zosterops 100, 107
gouldiae, Aethopyga 51, 52, 75, 77, 95, 96*
gouldiae, Chloebia 490, 508
gouldii, Phylidonyris 138 (als gouldi), 759
gouldii, Zonotrichia 189
graceannae, Icterus 774
graciae, Dendroica 322, 326, 342
gracilis, Meliphaga 116, 118, 124, 127, 150
gracilis, Zonotrichia 239
Grackel 591
Gracula 450, 591, 593, 602
— ptilogenys 592, 602, 621
— religiosa 602
— — andamanensis 603, 622
— — indica 595, 602, 605, 621
— — intermedia 592, 594, 603, 621
— — javanensis 603, 622
— — religiosa 592, 594, 603, 622
graculina, Strepera 645, 654, 658, 661
Graculipica 591
Graculus 699
— graculus 749
graculus, Graculus 749
graculus, Pyrrhocorax 697, 707, 718, 750
Gracupica 591, 601, 619
graduacauda, Icterus 370, 371, 381, 401, 216
graecus, Sturnus 600
graeffii, Pachycephala 489
Grafisia torquata 773
Grallina 144, 646
— bruijni 776
— cyanoleuca 646, 648, 672*
— picata 648
Grallinidae 591, 646, 648, 776
Grallininae 646
graminea, Zonotrichia 189
gramineus, Pooecetes 168, 196, 198, 248, 249
grammacus, Chondestes 198, 249
Granatellus pelzelni 773
— sallaei boucardi 336, 351
— — longicauda 351
— — sallaei 336, 350
— venustus 773
Granatina 487 f
granatina, Uraeginthus 489, 490, 509, 526
grandis, Acridotheres 592, 602, 620
grandis, Aplonis 607
srandis, Carpodacus 449, 479
grandis, Dierurus 608*, 632, 633, 638, 644
grandis, Ploceus 519, 545, 579
grandis, Saltator 274
srandis, Sturnus 600
granti, Serinus 438, 459, 460
Grantiella 140, 161
Grasfinken 487
Grauammer 169, 171, 389, 453
Grauastrild 527
Graubrustbaumelster 713
graueri, Estrilda 503
graueri, Euschistospiza 495
graueri, Nectarinia 68, 90
graueri, Ploceus 497*, 545, 579
graueri, Serinus 433, 440, 462
Grauschnäpper 284, 383
gravus, Cyclarhis 360, 363
grayi, Nectarinia 62, 85
grayi, Ploceus 539, 574
816
grayi, Zosterops 769
gregalis, Ploceus 583
grenadensis, Loxigilla 212, 262
greysoni, Quiscalus 388, 423
grindae, Psaltriparus 10
grinnelli, Parus 16
grisea, Sporophila 256, 257
griseicapilla, Lonchura 509
griseiceps, Basileuterus 773
griseigula, Timeliopsis 769
griseigularis, Passer 552
griseipectus, Atlapetes 216, 267
griseiventris, Parus 7, 19
griseiventris, Pyrrhula 452, 483
griseobarbatus, Vireo 361, 366
griseocristatus, Lophospingus 770
griseonota, Zosterops 108
griseonucha, Leucostiete 445, 446, 473
griseotincta, Zosterops 101, 107
griseovirescens, Zosterops 99, 111
grisoviridis, Lichmera 120, 147
griseus, Campylorhynchus 394, 399
griseus, Passer 523, 528, 532, 533, 534, 565, 566
griseus, Perisoreus 709, 739
griseus, Vireo 359, 360, 361, 364, 404
grossus, Pitylus 166, 221, 273
Großer Paradiesvogel 686
Großschnabelvireos 359
grotei, Pytilia 493
Grünfinken 430
Grünhäher 706
Grünkatzenvogel 665
Grünlinge 441, 444
Grünmanucodia 680
guadelupensis, Saltator 275
guatimalensis, Cyanocorax 698, 707, 734
guatimozinus, Psarocolius 370, 371, 375, 405,
406, £11, 774
Gubernatrix 165, 166, 219
— cristata 218, 269, 387
guianensis, Coereba 353
guianensis, Lampropsar 388, 423, 432*
guianensis, Leistes 419
guilielmi, Paradisaeus 677, 688, 694
guineensis, Nectarinia 51, 57, 96*
guira, Hemithraupis 279 (als Nemosia), 284, 306,
399
guira, Nemosia (jetzt Hemithraupis), 279, 306
Guiraca 165, 223, 276, 277
— caerulea 401
— concreta 275
guirahuro, Pseudoleistes 386, 421 (als guira-
hiro), 432
guisei, Ptiloprora 115, 119, 136, 157
gujanensis, Cyclarhis 352*, 360, 363
gularis, Icterus 370, 379, 380, 414
gularis, Melithreptus 118, 119, 131, 155, 160*
gularis, Paroaria 270
gularis, Serinus 396, 440, 461, 462
gundlachi, Dendroica 325, 340
gundlachii, Quiscalus 425
gundlachii, Vireo 360, 364
gurneyi, Promerops 146, 164
guttata, Calornis 318
guttata, Chlamydera 664, 666, 667, 671
guttata, Poephila 487, 488, 490, 506
guttata, Spermophaga 488, 495
guttata, Tangara 279, 280, 296, 298, 317, 318
guttatus, Passerculus 195, 244
gutturalis, Atlapetes 216, 267
gutturalis, Habia 279, 288, 309
gutturalis, Nectarinia 61, 85, 146
gutturalis, Neocichla 598, 613
gutturalis, Sporophila 258
gutturalis, Vermivora 324, 339
Gymnokitta 700, 729
Gymnomystax 369, 374, 382
— melanicterus 417
— mexicanus 369, 371, 372, 381, 395, 405, 407,
417
— montezuma (errore für Psarocolius m.) 371
Gymnomyza 123, 129
— aubryana 770
— samoensis 116, 137, 158
— viridis 770
gymnops, Melipotes 770
Gymnorhina 654, 657
— tibicen 656, 658
— — dorsalis 661, 672*
— — hypoleuca 660
— — leuconota 660
— — longirostris 660
— — terraereginae 660
— — tibicen 654, 660
Gymnorhinus 695, 700, 709
— cyanocephala 700, 729
Gymnaoris 518, 535, 568, 570
Gymnostinops 374, 375, 411 .
— montezuma 381
gyrola, Tangara 279, 280 (als gyruloides), 281,
296, 298, 304*, 318, 878
gyruloides, Calospiza 318
gyruloides (jetzt gyrola bangsi), Tangara 280
habessinica, Nectarinia 50, 52, 70, 91, 96*
Habia 278
— atrimaxillaris 772
— cristata 772
— fuscicauda 279
— — fuscicauda 288, 309
— gutturalis 279, 288, 309
— rubica 279, 280
— — affinis 287, 308
— — hesterna 288, 308
— — rubica 280, 287, 288, 308
— — rubicoides 281, 287, 308
Habia rubica rubra 280, 287, 304*, 308
— vinacea 287, 308
Habropyga 487
Häher 408, 697, 699, 700, 703
haematina, Spermophaga 488, 490, 495
haematocephala, Lagonosticta 499
haematopygia, Lagonosticta 433, 445, 472
Haematospiza 431, 452
— sipahi 433, 450, 481
haematostictum, Dicaeum 42, 44, 46
Haemophila 165, 250, 251
haemorrhous, Cacicus 200, 359, 370, 371, 376,
377, 400*, 405 (z. T. als Psarocolius), 407,
408, 412
haemorrhous, Psarocolius (recte Cacicus) 405
Hänflinge 542
Hagiopsar 591, 595, 596, 610
hahasima, Apalopteron 130, 154
halmaturina, Meliphaga 126, 152
halmaturina, Phylidonyris 137, 158
halmaturina, Zosterops 100 (als halmaturinae),
108
halmaturinus, Acanthorhynchus 141, 161
halseii, Dendroica 327, 342
haplochroma, Sporophila 207, 258
haplonotus, Parus 22
Haplospiza 166
— rustica 770
— unicolor 201, 253
harrissoni, Arachnothera 98, 764
harterti, Acanthis 445, 472
harterti, Dierurus 635, 640
harterti, Entomyzon 119, 131, 132, 156
hartlaubi, Dacnis 773
hartlaubi, Euplectes 520, 553, 354, 589
hartlaubii, Nectarinia 768
hartlaubii, Serinus 459
Hartlaubius 591, 599, 614
hasselti, Nectarinia 85
hassica, Sitta 29
Haubenhäher 699
Haubenschwarzvogel 407
Hausrotschwanz 196, 219
Haussperling 74, 183, 202, 300, 521, 529, 533,
533, 336, 550
hautura, Notiomystis 132, 156
hecki, Poephila 507
Hedydipna 56
— metallica 82
Hedymeles 220, 270, 271
heermani, Zonotricha 238
heilprini, Cyanocorax 776
heinei, Tangara 280, 292, 299, 319
heldingi (recte beldingi), Geothlypis 331
Heleia 99
— crassirostris, crassirostris 99, 102, 109
— muelleri 769
helenae, Parotia 676, 686, 693
52 Oologie, 40. Lieferung
817
Helinaia 330, 344
heliobates, Camarhynchus 770
heliobleta, Nectarinia 87
heliocides, Icterus £13
heliogona, Aethopyga 77, 97
hellmayri, Anthoscopus 7/2
hellmayri, Myioborus 334, 348
hellmayri, Sporophila 258
Helminthophaga 338
Helminthophila 322, 323, 338
Helminthotherus 344
Helmitheros vermivorus 322, 330, 344
Hemignathus lueidus 773
— obscurus 773
— wilsoni 356, 357
hemileucoptera, Pica 715, 746
hemispila, Nucifraga 698, 717, 749
Hemispingus atropileus 279 (als Chloro-
spingus)
— — auricularis 284, 306
— calophrys 771
— frontalis 771
— goeringi 771
— melanotis 771
— paradisi 771
— reyi 771
— rufosuperciliaris 771
— superciliaris 771
— trifasciatus 771
— verticalis 771
— xanthophthalmus 771
Hemithraupis flavicollis 771
— guira 279 (als Nemosia), 399
— — boliviana 284, 306
— ruficapilla 771
hendersoni, Podoces 697, 698, 716, 747
henslowi, Ammodramus 168, 196, 246
hepatica, Piranga 288, 309
herbicola, Emberizoides 167, 205, 256
hercules, Cracticus 656, 659
Hermotimia 50, 85, 86
— aspasia 86
— corinna 86
Hesperiphona 454, 486
hesperis, Corvus 698, 722, 758
hesperophila, Carduelis 444, 467
hesterna, Habia 288, 308
Heteralocha acutirostris 645, 648
Heterocorax 695
Heterorhynchus 356, 357
Heterospingus xanthopygius 772
Heteryphantes 517, 518, 574
heuglini, Ploceus 519, 520, 541, 576.
heurni, Lonchura 514
Heuschreckensänger 542
hewitti, Serinus 440, 461
hibernicus, Garrulus 735
hibernicus, Parus 18, 32*
818
hildebrandti, Spreo 591, 598, 608*, 614
hilgerti, Corvus 751
himalayana, Certhia 36, 37, 40
himalayanus, Pyrrhocorax 696, 698, 718, 749
himalayensis, Dendrocitta 636
himalayensis, Loxia 433, 451, 481
himalayensis, Sitta 26, 30
Himatione 355, 356, 357
— sanguinea freethii 355, 357
— — sanguinea 359, 357
hindustanica, Nectarinia 64, 86
hippocrepis, Sturnella 421
Hippolais 51, 123, 136, 542
— olivetorum 58, 174
— rama 37, 54
hirundinacea, Cypsnagra 283, 305
hirundinacea, Euphonia 279 (als Thraupis),
282, 294, 295, 304*, 315
hirundinaceum, Dicaeum 47
Hirundo 196
— rustica 139, 177, 194, 296, 322, 325, 327,
334, 521, 530, 542
hispaniolensis, Passer 69, 523, 532, 534, 563
hispaniolensis, Poospiza 203, 254
hispanus, Corvus 727, 760
Histurgops 518, 520, 522
— ruficauda 530, 560
hodgsoni, Certhia 39
Höhlenbrüter 523, 524
holboellii, Acanthis 445
Holoquiscalus 388, 390, 425, 426
— jamaicensis 425
holosericeus, Amblyramphis 371 (als h. hol.),
386, 387, 422, 432*
holosericeus, Cacicus 378, 412
holsti, Parus 764
homeyeri, Sitta 29
homochroa, Catamenia 770
Honigfresser 99, 113, 114, 117, 160*
Honigvögel 3
hoopesi, Sturnella 386, 421
hopwoodi, Dicrurus 633, 635, 641
hordeaceus, Euplectes 518—520, 552, 586
hornemanni, Acanthis 431, 441, 444, 445, 470
hortulana, Emberiza 166, 168, 174, 175, 176,
179, 180, 181, 184, 201, 228, 383
hosii, Oriolus 775
hottentottus, Dicrurus 632, 633, 636, 637, 638,
643
howei, Strepera 658, 661, 672*
hudsonia, Pica 698, 715, 746
hudsonicus, Parus 17
Hühnervögel 168
hulliana, Aplonis 606
humbloti, Nectarinia 51, 67, 88
humboldti, Phrygilus 201, 252
humei, Artamus 650, 652, 672*
humeralis, Agelaius 419
humeralis, Aimophila 199, 249, 401
humeralis, Ammodramus 166, 168, 196, 247
humeralis, Caryothraustes 771
humii, Carpodacus 433, 450, 480
humii, Sturnus 591, 600 ,617
humilis, Euphonia 295, 316
humilis, Pseudopodoces 716, 747, 748
humilis, Serinus 440, 462
hunsteini, Diphyllodes 677, 686, 693
hunsteini, Lonchura 774
hunteri, Nectarinia 61, 85 >
huttoni, Emberiza 227
huttoni, Vireo 360, 363
hyemalis, Junco 166, 168, 192, 193, 224*, 242,
243
hygrophila, Pytilia 493
Hylophilus 352*, 359
— aurantiifrons saturatus 352*, 362, 367
— brunneiceps 773
— decurtatus 362
— — decurtatus 368
— flavipes insularis 362, 368
— hypoxanthus 773
— muscicapinus muscicapinus 352*, 362, 367
— ochraceiceps ochraceiceps 359
— — pallidipectus 368
— pectoralis 359, 362, 367
— poicilotis poicilotis 367
— selateri 773
— semibrunneus 773
— semicinereus 773
— thoracicus 773
hymenaicus, Ploceus 547 (als hymenoicus), 581
Hypacanthis 430, 441 —443, 465
Hypargos 488
— margaritatus 490, 495
— niveoguttatus macrospilotus 490, 495
— — niveoguttatus 295
hyperboreus, Plectrophenax 188, 236
hyperythra, Erythrura 488, 507
Hyphantornis 518, 543— 546, 574— 580
Hyphanturgus 518, 538, 539, 541, 573—575
Hypochaea 295, 766
Hypochera 524—526, 557
hypocherina, Vidua 526, 557
hypochondria, Poospiza 770
hypochroma, Sporophila 770
hypochrysea, Dendroica 329, 343
hypochryseus, Vireo 361, 365
Hypoeryptadius 99
— cinnamomeus 769
hypodila, Anthothreptes 55
hypodilus, Anthreptes 55, 81
Hypogramma 50, 52
— hypogrammicum 52
— — nuchale 56, 82
Hypogrammatinae 52
hypogrammica, Pytilia 493, 529
hypogrammicum, Hypogramma 52, 56, 82
hypoleuca, Aphelocoma 702, 730
hypoleuca, Cissa 696, 712, 741
hypoleuca, Ficedula 99, 763
hypoleuca, Gymnorhina 660
hyploleuca, Spermophila 258
hypoleuca, Zonotrichia 190, 240
hypoleucum, Dieaeum 768
hypoleucus, Artamus 649, 651, 653
hypoleucus, Basileuterus 773
hypoleucus, Sphecotheres 775
hypomelas, Icterus £16
Hypopyrrhus 370, 388
— pyrohypogaster 387, 422
hypoxantha, Ploceella 521
hypoxantha, Sporophila 167, 207, 259
hypoxantha, Zosterops 99, 100, 106
hypoxanthus, Hylophilus 773
hypoxanthus, Ploceus 520—522, 547, 581
Hypositta corallirostris (auch als coralliirostris)
768
hypostictus, Serinus 433, 437, 458
hyrcanus, Garrulus 708, 737
hyrcanus, Parus 763
hyrcanus, Passer 532, 562
iagonensis, Passer 520, 523, 533, 534, 556, 565
ianthinogaster, Uraeginthus 490, 501, 525
ibadanensis, Malimbus 523, 541, 583
Ieteria 192, 214, 332, 336, 530, 766
— virens 401, 404, 766
— — auricollis 336, 351, 352*
— — virens 322, 336, 351
— viridis 351
ieterica, Carduelis 430, 443, 166
ieterica, Emberiza 233
Icteridae 200, 352*, 369, 398, 401, 403, 699,
773
Icteriden 187, 359, 369, 371, 375, 383, 384, 393,
404, 406409, 453
Ieterinae 369
ieterioides, Coccothraustes 431, 433, 453, 454
485
icterocephala, Tangara 280, 282, 297, 317
ieterocephalus, Agelaius 371, 396, 419
icterocephalus, Xanthocephalus 477
ieteronotus, Ramphocelus 281, 311
Icteropsis 518, 538, 573
Icterus 172, 369, 370, 378, 379, 382, 387, 398,
401
— auratus 379, 414
— auricapillus 4714
— baltimore 415
— bonana 381, 396, 416
— cayanensis 370, 379
— — cayanensis 412
— — chrysocephalus 371 u. 396 (errore als
Art), 379, 400*, 413
52*
819
Icterus cayanensis pyrrhopterus 379, 413
— chrysater 379
— — giraudii 378, 413
— chrysocephalus (recte sub cayanensis) 371,
396
— cucullatus 370, 380, 401, 402
— — californicus 215
— — ceucullatus 371, 372, 380, 415
nelsoni 370, 379, 415
— — sennetti 370, 379, 380, 415
— — trochiloides 415
— dominicensis dominicensis 370, 381, 416
— — hypomelas 4/6
— — melanopsis 371 (als melanopis), 381, 416
— — portoricenis 370, 378, 381, £16
— — prosthemelas 371 (als p.p.), 379, 381,
415
— galbula 369, 379— 381
— — bullockii 370, 380, 400*, 401, 415
— — galbula 371, 379, 380, 402, 415
— — parvus 380, 415
— graceannae 774
— graduacauda 370
— — audubonii 381, 401, 416
— — graduacauda 371, 381, £16
— — melanocephalus 2/6
— gularis 370, 380
— — gularis 379, 414
— — yucatanensis 379, 414
— icterus 399
— — icterus 370, 380, 415
— laudabilis 381, 416
— leucopteryx 379 (errore leucopterus), 413
— maculatus 774
— mentalis 474
— mesomelas 379
— — mesomelas 371, 414
— — salvinii 414
— nigrogularis 371, 379
— — curasoensis 4/3
— — helioeides 473
— — nigrogularis 473
— — trinitatis 413
— oberi 381, 416
— parisorum 378, 416
— pectoralis espinachi £14
— — pectoralis 4/4
— prosthemelas 371, 379 (s. dominicensis p.)
— pustulatus 380, 401
— — alticola 474
— — microstictus 369, 379, 414
— — pustulatus 379, 414
— spurius 370, 371, 401
— — spurius 380, 4715
— vulgaris 415
— wagleri 370, £15
— — 370, 381, £16
— xantholemus 774
820
Icterus xanthornus 413
ieterus, Icterus 370, 380, 399, 415
icterus, Serinus 466
idae, Petronia 569
Idiopsar brachyurus 770
igneiventris, Nectarinia 67, 89, 96*
igneus, Cardinalis 271
ignicapilla, Prionochilus 42, 48, 45
ignicapillus, Regulus 76
ignieauda, Aethopyga 51, 52, 77, 97
ignicolle, Dieaeum 47
igniferum, Dicaeum 768
ignipectus, Dicaeum 42, 47
ignitum, Dicaeum 47
igniventris, Anisognathus 280 (als Poeeilothrau-
pis), 293, 314
igniventris, Poecilothraupis (jetzt Anisognathus)
280
ignota, Geothlypis 331, 345
ignotus, Seleucides 692
iliaca, Zonotrichia 188, 223, 224*, 236, 237
iliolophum, Oedistoma 116, 120, 147 (als iliopho-
rum), 878
iliophorum, Oedistoma (recte iliolophum) 147
imberbis, Anomalospiza 523, 533, 555, 590
imitans, Euphonia 295, 316
imitatrix, Meliphaga 124, 150
impacifa, Scaphidura 370, 371, 404, 429
imparatus, Corvus 722, 723, 754
impetuani, Emberiza 168, 177, 178. 229
impiger, Parus 16
impiger, Serinus 433, 438, 259
impudicus, Corvus 751
inaestimata, Nectarinia 85
inauris, Acanthochaera 164
inca, Phrygilus 201, 252
incana, Estrilda 490, 501
incana, Lichmera 120, 147
Incaspiza ortizi 770
— pulchra 770
— watkinsi 770
indica, Gracula 595, 602, 605, 621
indieus, Oriolus 628
indicus, Passer 496*, 523, 532, 562
indiceus, Sturnus 617
indigotica, Diglossa 773
indistineta, Lichmera 113, 115, 119, 120, 147,
160*
indistincta, Phylidonyris 137, 158
inexpectata, Meliphaga 769
inexpectata, Sturnella 371, 372, 386, 421
inexpectata, Torreornis 770
infaustus, Perisoreus 696—698, 709, 714, 717,
720*, 739
inflexirostris, Quiscalus 425
infortunatus, Ploceus 582
infuscata, Myzomela 121, 148
infuscatus, Acridotheres 620
innexus, Dierurus 641 A
inornata, Catamenia 770
inornata, Phylidonyris 137, 158
inornata, Pinaroloxias 770
inornata, Tangara 296, 316
inornata, Thlypopsis 771
inornata, Zosterops 769
inornatus, Amblyornis 665, 670, 776
inornatus, Chlorospingus 771
inornatus, Parus 7, 24, 764, 878
inornatus, Philemon 769
inornatus, Rhabdornis 768
Insektenfresser 168, 523, 524
insignis, Artamus 776
insignis, Parus 19
insignis, Ploceus 520, 549, 583
insignis, Tachyphonus 286, 307
insignis, Zonotrichia 238
insolens, Corvus 721, 751
insperatus, Parus 22
insulae, Plectrophenax 188, 236
insularis, Aphelocoma 702, 730
insularis, Aplonis 775
insularis, Corvus 696— 698, 724, 758
insularis, Dierurus 635, 642
insularis, Hylophilus 368
insularis, Junco 193, 243
insularis, Parus 1/8
insularis, Psarocolius 370, 371, 372, 400*, 408,
410
insularis, Zonotrichia 190, 240
insulata, Sporophila 770
intensum, Dieaeum 45, 46
intercedens, Euplectes 586
intercedens, Ptiloris 677, 683, 687, 692
intercedens, Tachyphonus 282, 285, 307
interfusa, Passerina 276
interjecta, Vidua 523, 528, 529, 558
intermedia, Emberiza 234
intermedia, Euphonia 294, 316
intermedia, Gracula 592, 594, 603, 621, 622
intermedia, Nectarinia 66, 88
intermedia, Nigrita 487, 491, 492
intermedia, Petronia 536, 569
intermedia, Sporophila 207, 208, 209, 257, 272*
intermedia, Strepera 658, 662
intermedia, Zosterops 99, 106 ’
intermedius, Bubalornis 496*, 529, 559
intermedius, Corvus 698, 699, 724, 757
intermedius, Ploceus 519, 523, 542, 577
intermedius, Saltator 167, 273
internigrans, Perisoreus 776
internotus, Anthreptes 54, 80
interscapularis, Ploceus 547, 580
involucratus, Molothrus 428
involucris, Ixobrychus 221
inyoensis, Parus 16
iouschistos, Aegithalos 4, 10
irbü, Aegithalos 9
iredalei, Aegithalos 3, 10
Iridosornis analis 772
— jelskii 772
— porphyrocephala 772
— rufivertex 772
iris, Lamprotornis 775
irisae, Ortygospiza 505
irupero, Xolmis 399
isabellae, Oriolus 775
islandieca, Acanthis 445, 469
islandieus, Corvus 726, 760
isolata, Aethopyga 51, 75, 95, 96*
Isoxbrychus (recte Ixobrychus) 221
isthmicus, Cyanerpes 300, 319
isthmieus, Ramphocelus 289, 310
italiae, Aegithalos 9
italiae, Passer 532, 561
italieus, Parus /4
Ixobrychus (als Isoxbrychus) involucris 221
ixoides, Pyenopygius 769
Jacana 667
jacapa, Ramphocelus 3/0
jacarini, Volatinia 168, 205, 206, 256, 272*
jacksoni, Cryptospiza 494, 774
jacksoni, Euplectes 520, 521, 533, 355, 590
jacksoni, Ploceus 520, 521, 543, 546, 580
jagoensis, Estrilda 503
jagori, Lonchura 490, 513
jalla, Sturnus 601, 618
jamaica, Euphonia 279, 294, 314
jamaicensis, Corvus 722, 723, 754
jamaicensis, Holoquiscalus 425
jamesii, Phonygammus 672*, 677, 680, 681, 682,
689, 691
jamesoni, Lagonosticta 490, 525
jamesoni, Ploceus 575
jankowskii, Emberiza 174, 227
jankowskii, Pica 715, 746
japonensis, Corvus 724, 756
japonensis, Cyanopica 696, 697, 712, 742
japonica, Nucifraga 697, 717, 748
japonica, Zosterops 99, 100, 101, 103, 104
japonicus, Coccothraustes 453, 484
japonicus, Garrulus 734
javanensis, Graculus 603
javanensis, Ploceus 581
javanica, Lophozosterops 109
javaniceus, Acridotheres 594, 602,
javanicus, Dierurus 635, 641
jebelmarrae, Emberiza 177, 178, 228
jelskii, Iridornis 772
jentincki, Dicrurus 632, 637, 643
jerdoni, Lonchura 512
jewetti, Carduelis 444, 467
joanae, Ailuroedus 669
jobiensis, Philemon 119, 134, 157
608*, 620
821
jobiensis, Rectes 134
johannae, Nectarinia 52, 74, 94
johannae, Tangara 772
johannis, Acanthis 774
johnstoni, Nectarinia 51, 74, 94
johnstoni, Philemon 133, 156
jubaensis, Anthreptes 51, 95, 81
juddi, Zonotrichia 167, 237
jugularis, Myzomela 122, 149
jugularis, Nectarina 50—53, 63, 64, 65, 66, 71,
716, 86, 87, 88, 96*
Juida 597, 612
juliae, Arachnothera 769
juncicola, Ammodramus 195, 245
juncidis, Cisticola 178, 208, 555
Junco 166, 193, 197
— hyemalis 193
— — aikeni 192, 242
— — caniceps 192, 193, 194, 243
— — carolinensis 192, 242
— — eismontanus 192, 242
— — dorsalis 192, 193, 194, 243
— — hyemalis 168, 192, 193, 242
— — insularis 193, 243
— — mearnsii 192, 193, 242, 243
— — montanus 192, 193, 242
— — oreganus 192, 242
— — pinosus 192, 242, 243
— — pontilis 192, 242
— — shufeldti 192, 242
— — thurberi 192, 193, 224*, 242, 243
— — townsendi 192, 193, 242, 243
— phaeonotus 192, 194
— — bairdi 192, 193, 243
— — palliatus 166 (als phaeonota), 193, 243
— — phaeonotus 193, 243
— oreganus 242
— vulcani 192, 243
Jynx 717
— torquilla 717
Kaiserparadiesvogel 688
kalaharica, Emberiza 168, 182, 232
kalckreuthi, Nectarinia 51, 59, 84
kalgoorli, Cracticus 656, 660
kamtschaticus, Corvus 722, 727, 761
kamtschatkensis, Parus 7/5
kamtschatkensis, Pinicola 450, 180
Kanarienvogel 436
kangrae, Carpodacus 447, 475
kangrae, Parus 19
kansuensis, Cyanopica 697, 712, 742
kansuensis, Passer 534, 567
Kaphonigfresser 146
Kapkrähe 722
Kapweber 540
Kardinäle 165, 167, 168, 272*, 278
kasaica, Amblyospiza 572
822
katangae, Uraeginthus 500 Krauskopfblaurabe 705
kavirondensis, Ploceus 538, 573 kreffti, Mino 594, 602, 621
kawarahiba, Carduelis 442, 464 Kreuzschnabel 170, 451
keartlandi, Meliphaga 126, 152 krueperi (auch krüperi), Sitta 26, 27, 31
kebirensis, Lichmera 121, 147 krynicki, Garrulus 737
Kegelschnäbler 523 kuatunensis, Emberiza 179, 230
kelaarti, Lonchura 487, 512 kubaryi, Corvus 776
kempi, Cracticus 654, 659, 672* Kuckucke 44, 52, 53, 75, 96*, 117, 118, 409,
kempi, Myzomela 148 540, 552, 602, 727, 736*
kempi, Nectarinia 69, 90 Kuckucksweber 517, 556
kempi, Philemon 130, 157, 160* kuehni, Myzomela 769
keniensis, Estrilda 523 kuehni, Zosterops 769
kenricki, Poeoptera 775 Kuhstärlinge 391, 398, 399, 401— 404
keraudrenii, Phonygammus 672*, 677,680, 681, kundoo, Oriolus 623, 624, 628
682, 687, 689, 691 kurodai, Aplonis 593, 595, 626
Kernbeißer 389
kersteni, Ploceus 548, 583 labecula, Aethopyga 76, 95
khamensis, Emberiza 173, 226 labradorides, Tangara 772
Kiebitz 57 labradorius, Ammodramus 194, 243
kieneri, Melozone 215, 265, 266, 401, 402 lacertosa, Woodfordia 769
kikuyensis, Nectarinia 69, 90 lacertosus, Saltator 273
kikuyensis, Serinus 437, 458 lachrymosa, Euthlypis 334, 348
kikuyensis, Zosterops 110 Lacustroica 139, 159
kilianensis, Carpodacus 431, 433, 450, 479 ladacensis, Acanthis 471
kilimensis, Estrilda 490, 501 ladoensis, Euplectes 520, 551, 586
kilimensis, Nectarinia 51, 53, 74, 94 laemostietus, Dicrurus 632, 633, 636, 637, 643
kirkii, Nectarinia 59, 60, 84 laetior, Melithreptus 119, 131, 1755
kirtlandii, Dendroica 329, 344, 401, 404 lafargei, Myzomela 769
Kitta 710-712, 740, 741 lafresnayüi, Diglossa 773
kittlitzi, Calornis 606 Lagonosticta 489, 526
kiusiuensis, Aegithalos 9 — landanae 774
kivuensis, Nectarinia 70, 91 — larvata larvata 500
klaasii, Chrysococeyx 542 — — togoensis 490, 500
Kleiber 25, 26, 27, 32* — — vinacea 487, 499
Kleidervögel 355 — nitidula 487
kleinschmidti, Erythrura 487—489, 508 — — nitidula 498
kleinschmidti, Parus 7/5 — rara 826
Knipolegus 398 — — forbesi 488, 495, 526
kobayashii, Myzomela 122, 149 — — rara 498
koelzi, Sitta 30 — rhodopareia 487
koenigi, Fringilla 455 — — jamesoni 490, 499, 526
koepckeae, Cacicus 774 — — rhodopareia 499
Körnerfresser 168, 434, 523, 524 — ruberrima 527
Kohlmeise 140, 295 — — ruberrima 525 (s. L. senegala r.)
Kolibris 50 — rubricata 526
koliensis, Serinus 774 — — congica 499
kona, Loxioides 773 — — haematocephala 499
kordofanensis, Corvus 722, 752 — — polionota 499
koreensis, Cyanopica 712, 742 — — rubricata 490, 499, 525
korejevi, Acanthis 433, 445, 471 — rufopicta rufopieta 487, 488, 498, 526
korejevi, Parus 74 — senegala 487
korejewi, Passer 561 — — brunneiceps 490, 498, 525
koslowi, Emberiza 770 — — rendalli 490, 498, 525
kotschubeii, Carpodacus 449, 479 — — rhodopsis 498, 525
Krähen 201, 220, 529, 656, 657, 685, 705, 715, -— — ruberrima (recte r. rub.) 498, 526
117, 7233 723, 1724 — — senegala 490, 498, 524, 525
Kragenhopf 685 — zedlitzi 98
Kragenlaubenvogel 667, 668 Laletes 695, 739
Laloeitta 708, 739
lamperti, Nectarinia 60, 85, 96*
Lamprocolius 591, 596, 597
Lamprocorax 591, 593, 609
— chalybea 607
Lampropsar 370, 388, 427
— sumichrasti 423
— tanagrinus 388, 427
— — guianensis 388, 423, 432*
— — tanagrinus 388, 396, 423
Lamprospiza melanoleuca 771
Lamprotes 278, 283, 305
Lamprothreptes 52
Lamprotornis 596, 597
— acuticaudus 775
— australis 592, 597, 612
— burchellii 597
— caudatus 591, 597, 612
— chalcurus 592, 593
— — chalcurus 597, 611
— chalybaeus 592 (als chalybeus), 595, 597,
598
— — ceyaniventris 597, 611
— — nordmanni 593, 597, 611
— — sycobius 597, 611
— chloropterus 597
— — elisabeth 592, 597, 611
— corruseus 591
— — corruscus 596, 610
— cupreocauda 775
— iris 775
— melanogaster 610
— mevesii 591, 596, 597
— — mevesii 597, 612
— nitens bispecularis 611
— — ceulminator 596, 611
— — nitens 611
— — phoenicopterus 594, 596, 597, 611
— ornatus 775
— porphyropterus 612
— purpureiceps 596, 610
— purpureus 591 (als pupureus)
— — amethystinus 596, 611
— — purpureus 594, 596, 610
— purpuropterus purpuropterus 597, 612
— splendidus 592, 593
— — bailundensis 597, 612
— — glaucovirens 612
— — splendidus 594, 597, 612
lanceolata, Plectorhyncha 116, 119,139, 759, 160
lanceolata, Rhinocerypta 318
lanceolatus, Garrulus 696, 698, 708, 739
lanceolatus, Plectorhynchus s. lanceolata,
Plectorhyncha 119
landanae, Lagonosticta 774
languens, Tangara 296, 316
Laniidae 450, 593, 650, 654, 713
laniirostris, Evphonia 295, 315
823
Lanio aurantius (als aurantium) 307, 771
— fulvus 771
— leucothorax 279
— melanopygius 285, 307
pogon), 878
— versicolor 771
Lanius 283, 391, 649, 699
— collurio 129, 217, 356, 522, 631, 636, 649,
650, 651, 707, 713
— excubitor 391, 645, 649, 650, 705,
— minor 716
— nubicus 651, 712
Lanivireo 365
lapersonnei, Carpodacus 431, 449, 479
lapponicus, Calcarius 167, 181, 184, 186, 187,
224*, 235, 390
lapponicus, Parus 16, 878
Laridae 699
Larus 666, 681
larvata, Lagonostieta 487, 490, 499, 500
larvata, Paroaria 269
larvata, Tangara 279, 282, 296, 299, 319
larvatus, Oriolus 623, 625, 629
lateralis, Poospiza 197, 203, 254, 272*, 230,
281, 283
lateralis, Tangara 279, 297, 317
lateralis, Zosterops 99, 100, 101, 102, 107, 108
Laterallus 384
— albigularis 386
lathami, Francolinus 132
lathami, Melophus 168, 224*, 225
lathami, Neositta 32*, 34
lathami, Parus 1/6
lathamii, Quelea 523 (als lathami), 551, 585
laticauda, Euplectes 554, 589
latielavius, Saltator 275
latifascia, Emberiza 168, 181, 231
latimeri, Vireo 359, 361, 365
latinuchus, Atlapetes 217, 267
latipennis, Lophorina 677, 681, 685, 693
latirostris, Psarocolius 773
Latoucheornis siemsseni 770
Laubenvögel 389, 663, 664, 666, 672*, 673— 677
laubmanni, Emberiza 179, 230
Laubwürger 359
laudabilis, Icterus 381, 416
laurencei, Corvus 761
lauta, Euphonia 315
lauterbachi, Chlamydera 664, 668, 671
lavinia, Tangara 772
lawesii, Parotia 676, 677, 686, 693
lawrencei, Carduelis 402, 430, 444, 467
lawrencıi, Aimophila 765
layardorum, Dicaeum 42, 44, 47
lazula, Passerina 277
lebruni, Sicalis 204, 255
lecelancherü, Passerina 771
leconteii, Ammodramus 196, 246
(errore melano-
824
ledouci, Parus 18
Legatus leucophaius 374, 407
leguati, Necropsar 775
leilavalensis, Meliphaga 127, 152
leimonias, Carduelis 445, 471
Leistes 318, 384, 399
— guianensis 219
— militaris 370, 371, 396
— — militaris 371, 383, 400*, 419, 432
— — superciliaris 420
— viridis 421
lepcharum, Parus 22
lepida, Chloroparia 80
lepida, Tiaris 261
Lepidopygia 487, 510
lepidus, Philetairus 496*, 531, 560
Leptocoma 50, 85—88
Leptomyza 137
Leptopoecile 7, 44
— sophiae 7
Leptornis 137, 158
— samoensis 606
Lerchen 51, 73, 185, 202, 212, 279, 284, 297,
382, 531, 545, 633
lessoni, Xanthotis 753
leucoblepharus, Basileuterus 335, 350
leucocephala, Arundinicola 396
leucocephala, Emberiza 167, 171, 172, 183, 235,
770 |
leucocephala, Lonchura 574
leucocephala, Neositta 34
leucocephalus, Stephanophorus 374
leucocephalus, Sturnus 601, 619
leucogaster, Artamus 652
leucogaster, Cinnyrieinclus 592, 598, 612
leucogaster, Cinnyris 89
leucogastra, Dendrocitta 696—699, 713, 744
leucogastra, Lonchura 490, 512
leucogastroides, Lonchura 571
leucogenis, Dierurus 641
leucogenys, Aegithalos 3, 4, 10
leucogenys, Conirostrum 773
leucogenys, Melithreptus 130, 154, 155
leucogenys, Pyrrhula 774
leucognaphalus, Corvus 696, 723, 736*, 755
leucolaema, Serinus 434, 441, 463
leucomelas, Entomophila 150
leucomelas, Parus 7, 19
leucomelas, Turdus 395
leuconota, Gymnorhina 660
leuconotus, Malimbus 550, 584
leuconotus, Parus 768
leuconucha, Sitta 30
Leucopeza semperi 773
leucophaea, Climacteris 37, 38, 41
leucophaeus, Dierurus 632, 633, 635, 636, 641
leucophaeus, Schistochlamys 305
leucophaius, Legatus 374, 467
leucophoea, Speirops 99, 112
leucophrys, Basileuterus 773
leucophrys, Zonotrichia 191, 194, 197, 214,
241
leucopis, Atlapetes 771
leucops, Dierurus 637, 643
Leucopsar rothschildi 592, 594, 601, 619
leucopsis, Sitta 27, 31
leucoptera, Loxia 433, 451, 482
leucoptera, Neositta 35
leucoptera, Pica 698, 745
leucoptera, Piranga 282, 288, 304*, 310
leucoptera, Sporophila 207, 209, 258
leucopterus, Atlapetes 771
leucopterus, Cracticus 655, 659
leucopterus, Platysmurus 697, 700, 729
leucopterus, Serinus 440, 462, 774
leucopteryx, Icterus 379 (errore leucopterus), _
413
leucopygia, Phaeothlypis 335, 350
leucopygialis, Artamus 649, 650, 652
leucopygialis, Dierurus 635, 642
leucopygius, Serinus 436, 437, 458
laucoramphus, Cacicus 774
leucorhynchus, Artamus 649, 650, 652, 672*
leucorhynchus, Pitohui 680
leucorrhoa, Tachycineta 398
leucostephes, Melidectes 770
leucosticta, Certhia 40
leucostieta, Lonchura 774
leucostieta, Ptilorrhoa 684, 686, 704
Leucosticte 430, 431 (errore Leucisticte), 445,
536
— arctoa arctoa 445, 472
— — atrata 446, 4173
australis 446, 473
— — brunneonucha 445, 473
— — dawsoni 446, 473
— — griseonucha 445, 446, 473
— — littoralis 446, 473
— — tephrocotis 446, 473
— — umbrina 431, 446, 473
— brandti brandti 445, 472
— — haematopygia 433, 445, 472
— — margaritacea 433
— nemoricola altaica 433, 445, 472
— — nemoricola 433, 445, 472
leucothorax, Lanio 279, 285, 307
leucothorax, Tachyphonus 285, 307
leueotis, Garrulus 708, 738
leucotis, Meliphaga 118,127, 153
leucotis, Melozone 770
leucotis, Poephila 507
leucotis, Vireolanius 773
leucura, Oenanthe 188
leucurus, Pinicola 450, 4180
levaillantii, Corvus 698, 724, 757
leveriana, Cissopis 281, 283, 304*, 305
|
|
lewinii, Meliphaga 115, 118, 119, 124, 129, 150,
160*
Lichenops 398
Liehmera 113, 121
— alboauricularis 115
— — alboauricularis 121, 147
— argentauris 769
— cockerelli 116, 121, 147
— deningeri 769
— flavicans 769
— flavotincta 147
— incana griseoviridis 120, 147
— indistineta 113, 115, 120
— — indistincta 119, 120, 147
— — ocularis 119, 120, 147, 160*
— lombokia 769
— monticola 769
— notabilis 769
— squamata 115
— — kebirensis 121, 147
lichtensteini, Euphonia 315
lidthi, Garrulus 696, 708, 739
Ligurinus 430, 441, 442, 463, 464
Iilianae, Sturnella 386, 421
limes, Certhia 36, 20
Limnothlypis 321
— swainsoniü 322, 330, 344
Limosa 656
limpopoensis, Emberiza 178, 229
linaria, Linaria 469
Linaria 430, 444, 471
— linaria 469
lincolnii, Zonotrichia 189, 239
lineata, Dacnis 772
lineata, Sporophila 257
lineola, Sporophila 168, 207, 208, 257, 258, 272*
Linota 445, 470, 472
Linura 557
Linurgus olivaceus olivaceus 430, 441, 463
littorale, Conirostrum 336, 351
littoralis, Agelaius 218
littoralis, Leucosticte 446, 473
littoralis, Parus 17
littoralis, Uraeginthus 500
lloydi, Psaltriparus 11
Loboparadisea sericea 776
Locustella 137, 521, 542
— fluviatilis 531
— luscinioides 402
— naevia 531
locustella, Ortygospiza 489, 505
lombokia, Lichmera 769
Lonchura 487, 527
— bicolor bicolor 510
— — nigriceps 490 (errore sub poensis), 510,
767
— — poensis 490 (als Art), 510
— caniceps caniceps 5/4
825
Lonchura castaneothorax 487
— — castaneothorax 515
— — ramsayi 515
— — sharpii 490, 515
— — ceucullata 488, 491, 527
— — ceucullata 491, 509
— — seutata 487, 488, 490, 491, 509, 527
— flaviprymna 514
— forbesi 514
— fringilloides 490, 510, 527
— fuscans 491, 511
— grandis heurni 5/4
— griseicapilla 509
— hunsteini 774
— kelaarti jerdoni 512
— — kelaarti 487, 512
— leucogastra leucogastra 512
— — manueli 490 (als manuelis), 512
— leucogastroides 511
— leucostieta 774
— maja leucocephala 574
— — maja 5/4
— malabarieca 490
— — cantans 509
— — malabarica 509
— — meridionalis 509
— orientalis 509
— malacca atricapilla 513
— — brunneiceps 513
— — ferruginosa 513
— — formosana 513
— — jagori 490, 513
— — malacca 513
— orientalis 513
— — rubroniger 573
— — sinensis 513
— melaena 515
— molucca 487
— — molucca 5/1
— — propinqua 511
— — vagans 511
— montana 774
— monticola 774
— nana 488, 509
— nevermanni 774
— pallida pallida 51/4
— — subcastanea 5/4
— pectoralis 487, 515
— poensis nigriceps (recte bicolor n.) 490
— punctulata 487
— — cabanisi 512
— — fretensis 5/2
— — nisoria 512
— — particeps 512
— — punctulata 511
— — subundulata 57/1
— — topela 490, 512
— quinticolor 774
826
Lonchura spectabilis spectabilis 514
— striata 487
— — acuticauda 510
— — fumigata 510
— — phaethontoptila 511
— — squamicollis 511
— — striata 510
— — subsquamicollis 510
— — swinhoei 511
— stygius 487 (als stygia), 515
— teerinki 774
— tristissima 774
vana 774
Eehrak 487, 488
Lonchurinae 517
longicauda, Embernagra 770
longicauda, Granatellus 351
longieauda, Melanocharis 768
longicaudatus, Dierurus 633, 635, 641
‚ longicaudatus, Mimus 394
longipennis, Chlorophonia 316
longipennis, Sporophila 256
longirostra, Arachnothera 51—53: 77, 78, 96*,
97, 114
longirostra, Rukia 769
longirostris, Cyanerpes 300, 304*, 319
longirostris, Gymnorhinus 660
longirostris, Parus 14
longirostris, Phylidonyris 137, 158, 160*
longirostris, Thryothorus 284
longuemarei, Anthreptes 52, 55, 58, 81
loochooensis, Zosterops 103
Lophophanes 6, 17, 18
Lophorina 676, 678, 683
— superba latipennis 677, 681, 685, 693
— — minor 685, 693
lophorinus, Dierurus 632, 638, 644
Lophospingus 166
— griseocristatus 770
— pusillus 202, 253
lophotes, Pseudoseisura 392
Lophozosterops 99
— dohertyi suberistata 100, 102, 109
— goodfellowi 769
— javanica frontalis 109
— — javanica 109
— pinaiae 769
— squamiceps 769
— superciliaris 769
lorentzi, Ptiloprora 158
Loria loriae 776
loriae, Loria 776
loriae, Ptilorrhoa 684, 686, 704
loricata, Compsothraupis 279 (als loricatus),
283, 305
lotenia, Nectarinia 51, 62, 64, 66, 86
louisiadensis, Cracticus 776
loveridgei, Nectarinia 70, 91, 768
Loxia 170, 430, 431, 441, 448, 450, 452
— curvirostra 356, 450
— — balearica 451, 481
— — bendirei 482
— — benti 451, 482
— — curvirostra 433, 451, 481
— — himalayensis 433, 451, 481
— — minor 482
— — poliogyna 481
— — scotica 451, 481, 492*
— — tianschanica 433, 482
— leucoptera 451
— — bifasciata 433, 451, 482
— — leucoptera 482
— pytyopsittacus 433, 451, 481, 492*
Loxigilla 165— 167
— noctis barbadensis 212, 262
— — dominicana 212, 262
— — grenadensis 212, 262
— portoricensis 770
— violacea affinis 212, 261
— — maurella 212, 261
— — ruficollis 212, 262, 272*
Loxioides bailleui 356, 358
— cantans cantans 356. 357
— — ultima 356, 358
— flaviceps 773
— kona 773
— palmeri 773
Loxipasser 166, 212, 261, 262
— anoxanthus 212, 261
— violacea 262
Loxops 355, 356, 357, 878
— coccinea caeruleirostris 336, 357
loyca, Sturnus 420
loyei, Molothrus 401, 428
lucasanus, Vireo 366
luciae, Vermivora 324, 339
lucidipectus, Nectarinia 51, 69 (errore viridi-
pectus), 73, 93, 96*
luceidus, Chaleites 117
lucidus, Cyanerpes 300, 319
lucidus, Hemignathus 773
lucifer, Carpodacus 449, 479
luctuosa, Sporophila 207, 208, 258
luctuosus, Tachyphonus 279, 280, 285, 286,
307
ludovicensis, Cinnyris 90
ludoviciana, Piranga 281, 288, 310
ludovicianus, Pheucticus 167, 220, 270
ludwigii, Dierurus 608*, 632, 633, 634, 636, 639
luehderi, Nectarinia 69, 70, 90
lugens, Parus 14
lugubris, Cisticola 527
lugubris, Dierurus 639
lugubris, Parus 7, 14, 763, 764
lugubris, Poeoptera 592, 594, 595, 609
lugubris, Quiscalus 370, 390, 395, 396, 425, 426
lugubris, Speirops 99, 112
Lullula 169
— arborea 402
lumholtzi, Neositta 34, 35
luminosus, Quiscalus 425
lunatus, Melithreptus 119, 130, 131, 155
lunulata, Anthochaera 119, 145, 164
lunulatus, Anisognathus 293, 314
Luscinia megarhynchos 541
— svecica 542
luscinioides, Locustella 402
lutea, Manorina 142, 143, 162, 163
lutea, Myzantha 163
lutea, Piranga 309
lutea, Sicalis 166, 204, 205, 255
lutea, Zosterops 99, 101, 107
luteicapilla, Euphoria 279 (als Thraupis), 281,
282, 294, 314
luteifrons, Nigrita 487, 492
luteirostris, Zosterops 769
luteiventris, Siealis 204, 205, 255
luteocephala, Sicalis 204, 255
luteola, Coereba 353
luteola, Emberiza 233
luteola, Sicalis 204, 205, 255
luteolus, Ploceus 519, 523, 538, 573
luteoviridis, Basileuterus 773
luteoviridis, Pselliophorus 771
lutescens, Vermivora 323, 338
luteus, Passer 520, 534, 568
luxuosus, Cyanocorax 706, 733
lwenarum, Serinus 431, 438, 459
Lyecocorax 645, 675— 677, 767
— pyrrhopterus 667
— — obiensis 667, 678, 690
— — pyrrhopterus 679, 690
Lysurus 166, 217,278
— castaneiceps castaneiceps 218, 269
maccowni (recte mecowniü). Calcarius 186
macella, Nucifraga 697, 698, 717, 748
macgillivraii, Ammodramus 195, 245
macgillivrayi, Geothlypis 346
Macgregoria 675, 677
— pulchra 673
— — carolinae 678, 690
macgregoriae, Amblyornis 664, 665, 670
macgregorii, C'nemophilus 675, 678, 690
Machlolophus 6, 22, 23
macleayana, Meliphaga 118, 119, 128, 154
Macroagelaius subalaris 774
macrocephala, Cyanocitta 701, 730
macrocercus, Cacomantis 53
macrocercus, Dicrurus 632, 633, 634, 635, 636,
640, 641
Macrocorax 752
macrodactyla, Certhia 36, 39
macronyx, Aegithalos /2
827
macronyx, Pipilo 213, 214, 263, 264
macronyx, Remiz 5, 12
macrorhynchos, Corvus 697 — 699, 715, 724, 756,
757
macrorhynchos, Nucifraga 717, 748
macrospilotus, Hypargos 490, 495
macroura, Penthetria 518, 527, 590
macroura, Vidua 489, 491, 492*, 510, 523,
525, 326, 527, 528, 558
macrourus, Atlapetes 217, 268
macrourus, Euplectes 519, 520, 523, 535, 553.
554, 589
macrourus, Megaquiscalus 387 —390, 424
macrurus, Aegithalos 9
macrurus, Emberizoides 256
maculalatus, Ieterus 774
maculata, Chlamydera 663, 667, 668, 671, 679
maculata, Paroreomyza 356, 357
maculatus, Chaleites 96
maculatus, Oriolus 625, 628
maculatus, Pheucticus 271
maculatus, Pipilo 214, 264
maculatus, Prionochilus 768
maculicollis, Serinus 438, 460
maculosa, Dendroica 343
maculosus, Ailuroedus 663, 665, 669, 672* (als
Ailuroedes)
maculosus, Psarocolius 370, 372, 408, 410
madagascariensis, Caprimulgus 636
madagascariensis, Foudia 551, 585
madagascariensis, Nectarinia 88
madagascariensis, Phyllastrephus 132
madagascariensis, Saroglossa 614
madagascariensis, Zosterops /11
Madanga ruficollis 769
madaraspatanus, Oriolus 629
madaraszi, Carduelis 442, 463
madaraszi, Serinus 460
madeirensis, Regulus 76
Madenhacker 603
maderaspatana, Zosterops 99, 111, 112
maderensis, Fringilla 434, 455
maderensis, Petronia 535, 569
magellani, Carduelis 430, 431, 441, 443, 465,
466
magister, Vireo 362
magna, Aplonis 775
magna, Arachnothera 50, 52, 53, 78, 79, 96*,
98
magna, Euphonia 315
magna, Sitta 768
magna, Sturnella 283, 370—372, 383, 384,
385, 356, 400*, 402, 403, 419—421
magnifica, Aethopyga 52, 53, 57, 97
magnifica, Megaloprepia 666
magnificus, Diphyllodes 676—678, 686, 693
magnificus, Ptiloris 676, 677, 683, 687, 692
magnirostris, Cardinalis 271
8328
magnirostris, Coereba 337, 351
magnirostris, Geospiza 763, 764, 765
magnirostris, Ramphocelus 289, 304*, 310
magnirostris, Urocissa 696, 697, 711, 720*, 741
magnoides, Saltator 222, 273
magnolia, Dendroica 322, 328, 343
magnus, Saltator 273
mahali, Plocepasser 496*, 517, 519, 523, 529,
530, 559, 560
mahrattarum, Parus 21
mahrattensis, Acridotheres 602, 620
mailliardorum, Agelaius £18
maja, Lonchura 514
major, Carduelis 433, 468
major, Cassidix 170
major, Cissopis 283, 305
major, Diglossa 773
major, Emberiza 232
major, Myzomela 122, 149
major, Nectarinia 73, 93, 94
major, Parus 6, 7, 20—22, 27, 205, 295, 297,
336, 596, 763, 764
major, Quiscalus 170, 370, 339, 424
major, Taraba 392
malabarica, Lonchura 490, 509
malabaricus, Dierurus 644
malabaricus, Sturnus 592, 594, 599, 602, 615
malacca, Lonchura 490, 513
malaccensis, Passer 523, 534, 567
malacensis, Anthreptes 51, 52, 54, 80, 146
Malacirops mauritiana 112
Malacocinela sepiarium 530
malaitae, Aplonis 595, 607
malaitae, Myzomela 769
malayensis, Dendrocitta 696, 698, 699, 713,
714, 743
malimbicus, Malimbus 519, 520, 549, 584
Malimbus 517—519
— ballmanni 775
— cassini 775
— coronatus 775
— erythrogaster 775
— ibadanensis 523, 549, 583
— malimbicus 519, 520, 549
— — malimbicus 584
— — nigrifrons 549, 584
— melanotis 519, 520, 584
— nitens 520, 521, 523, 549, 583
— racheliae 775
— rubriceps leuconotus 519, 520 (als M.
melanotis), 549 (als melanotis), 550, 584
— — melanotis (jetzt leuconotus) 549
— — rubriceps 547, 550, 584
— rubriecollis 519, 520
— — bartletti 549
— — nigeriae 549
— — rubricollis 549, 583
— scutatus 519
Malimbus scutatus scutatus 549, 583
— — scutopartitus 549, 583
mallorcae, Carduelis 442, 463
mallorcae, Parus 20
Malurinae 3
Malurus 124, 139, 140
— cyaneus 140
mana, Paroreomyza 356, 357
mandelli, Alcippe 146
mandelli, Montifringilla 570
mandibularis, Zosterops 99, 105
Mandingoa nitidula 487
— — chubbi 490, 493
mandshuricus, Corvus 724, 756
manimbe, Myospiza 247
manipurensis, Aegithalos 3, 10
manipurensis, Certhia 36, 20
manoensis, Nectarinia 68, 89
Manorina 114, 115
— flavigula 116, 118, 133, 142, 163
— — alligator 142, 162, 163
— — clelandi 142, 162
— — flavigula 119, 142, 143, 162, 163
— — lutea 142, 143, 162, 163 ı
— — obscura 140, 142, 143, 162
— melanocephala 116, 123, 133, 134, 137, 143
— — crassirostris 142, 162
— — melanocephala 119, 141, 142, 162
— melanophrys 116, 118, 119, 141, 162
— melanotis 116, 143, 163
Manucodia 645, 674— 678, 679, 681
— ater 679, 724 (als atra)
— — ater 677, 679, 690
— — subalter 672*, 680, 682, 690
— atra (jetzt ater) 724
— chalybatus 677, 680, 685, 690
— — orientalis 680, 685, 690
— comrii 666, 675, 681
— — comri 681, 690
— — trobriandi 681, 691
— jobiensis 675, 679, 681
— — rubiensis 680, 687, 690
manuelis, Lonchura 490 (als manuelis), 512
manyar, Ploceus 519, 548, 581, 582
marchei, Cleptornis 116, 129, 154
marchei, Euethia 261
marchii, Tiaris 261, 272*
margaritacea, Leucosticte 433
margaritae, Conirostrum 773
margaritae, Paradisaea 689, 694
margaritae, Tangara 298, 318
margaritatus, Hypargos 490, 495
mariquensis, Nectarinia 51, 53, 72, 92
maritimus, Ammodramus 195, 245
marleyi, Ploceus 541, 576
marmoratus, Pycnopygius 119, 132, 156
marshalli, Serinus 433, 439, 460
martinicana, Coereba 353
marwitzi, Euplectes 587
massaica, Estrilda 488, 502
massaica, Petronia 568
mastersi, Gerygone 120
masukuensis, Parus 20
matutina, Zonotrichia 190, 240
maugei, Dieaeum 768
maurella, Loxigilla 212, 261
mauritanica, Pica 697, 715, 720*, 745
mauritiana, Malacirops 112
mauritiana, Zosterops I/11
mavornata, Aplonis 775
maxi, Zosterops 106
maxillosus, Saltator 771
maxima, Amblyospia 572
maxima, Pteropodocys 655
maximus, Artamus 776
maximus, Pyrenestes 294
maximus, Saltator 167, 222, 273
maya, Cyanocorax 706, 734
mayeri, Astrapia 673, 684, 692
maynardi, Vireo 364
mayottensis, Zosterops 102, 112
mecowni, Calcarius 186 (als maccowni), 235
megregori, Carpodacus 448, 477
meadewaldoi, Acanthis 445, 472
mearnsi, Agelaius £18
mearnsi, Junco 192, 193, 242, 243
media, Fringillaria 229
medianus, Saltator 273
mediocris, Nectarinia 51, 69, 70, 90
mediogriseus, Ammodramus 194, 244
medius, Vireo 364
meeki, Anthreptes 147
meeki, Oedistoma 120, 147
meekiana, Ptiloprora 770
megalonyx, Pipilo 214, 264
Megaloprepia magnifica assimilis 666
megapotamus, Agelaius 218
Megaquiscalus 387 —390, 424
megarhyncha, Zonotrichia 188, 237
megarhynchos, Certhia 36, 40
mesarhynchos, Luscinia 541
megarhynchus, Dierurus 775
megarhynchus, Melilestes 116, 119, 120, 132,
133, 141
megarhynchus, Ploceus 519, 523, 548, 582
mesistus, Aaptus £22
Meinas 591
Meisen 4, 6, 25, 27, 32*, 36, 44, 51, 206, 279,
327, 330, 385
Meisenartige 3
melaena, Lonchura 575
Melaenornis pammelaina 178
melaleucus, Artamus 650, 652
melaleucus, Tachyphonus 308
Melamprosops phaeosoma 773
melancholicus, Tyrannus 638
829
melanicterus, Cacicus 370, 371, 378, 412
melanieterus, Gymnomystax 417
melanicterus, Melophus 225
melanocephala, Anthornis 144, 163
melanocephala, Emberiza 167, 175, 183, 184,
200, 224*, 232,521
melanocephala, Manorina 116, 119, 126, 133,
134, 137, 141, 142, 143, 162
melanocephala, Myzomela 769
melanocephala, Speirops 112 (als melanocepha-
lus)
melanocephala, Sporophila 257
melanocephalus, Ailuroedus 664, 665, 669
melanocephalus, Atlapetes 771
melanocephalus, Icterus £16
melanocephalus, Garrulus 737
melanocephalus, Melithreptus 755
melanocephalus, Myioborus 773
melanocephalus, Pardalotus £9
melanocephalus, Pheucticus 220, 270, 271,
2712*, 454
melanocephalus, Ploceus 519—521, 545, 546,
380
melanocephalus, Speirops 112 (recte melano-
cephala)
Melanocharis 42
— arfakiana 768
— longicauda 768
— nigra 768
— striativentris 42
— — striativentris 45, 764
— versteri 768
melanochlamys, Buthraupis 772
Melanochlora 6
— sultanea 8
— — sultanea 6, 24
melanochlorus, Chrysoptilus 392
melanocorys, Calamospiza 188, 236
melanocyanea, Cissilopha 696, 697, 703, 704,
732
melanodera, Melanodera 201, 252
Melanodera 166
— melanodera melanodera 201, 252
— — princetoniana 201, 252
— xanthogramma 770
melanogaster, Lamprotornis 610
melanogaster, Ploceus 520, 540, 574
melanogaster, Ramphocelus 772
melanogaster, Sporophila 770
melanogastra, Nectarinia 52, 73, 93
melanogenys, Basileuterus 335, 349
melanogyna, Molothrus 396, 397, 399, 428
melanoleuca, Lamprospiza 771
melanoleuca, Poospiza 202, 203, 254, 272*
melanoleuca, Seleucidis 677, 683, 692
melanolophus, Parus 6, 7, 17, 32*
melanonota, Pipraeidea 772
Melanophorus (recte Melanoploceus) 547
8330
melanophrys, Manorina 116, 118, 119, 141, 162
melanopis (recte melanopsis), Icterus 371
melanopis, Schistochlamys 281, 282, 283, 305
Melanoploceus 547 (als Melanophorus), 580
melanopogon (statt melanopygius), Lanio 307
melanops, Artamus 649, 650, 651, 653
melanops, Buarremon 267
melanops, Emberiza 233
melanops, Geothlypis 331, 345
melanops, Gliciphila 139
melanops, Meliphaga 119, 127, 128, 131, 153
melanops, Phylidonyris 115, 116, 138, 159
melanops, Sporophila 770
melanops, Trichothraupis 308
melanopsis, Ieterus 371 (als melanopis), £16
melanoptera, Dendroica 325, 340
melanoptera, Strepera 654, 658, 661
melanoptera, Thraupis 281, 291, 292, 304*, 313
melanopterus, Sturnus 592, 601, 619
Melanopteryx 518, 545, 579
melanopygius, Lanio 285, 307 (als melanopogon)
melanorhamphus, Corcorax 646, 648, 672*
melanorhyncha, Eudynamys 602
melanorhynchus, Plocepasser 496*, 530, 559
Melanospiza 337
— richardsoni 770
melanosternus, Acridotheres 602, 620
melanota, Amblyospiza 571
melanota, Climacteris 37, 41
melanotis, Ailuroedus 665, 669
melanotis, Anaplectes 517, 550, 584
melanotis, Coryphaspiza 771
melanotis, Estrilda 501, 502, 526
melanotis, Hemispingus 771
melanotis, Malimbus 519 u. 520 u. 549 (heute
leuconotus), 584
melanotis, Manorina 116, 143, 163
melanotis, Psaltriparus 11
melanotis, Sitta 30
melanotos, Pica 715, 745
melanotus, Sarcops 594, 602, 621
melanoxanthum, Dicaeum 33*, 42, 43, 45
melanoxanthus, Ploceus 539, 574
melanozantus, Coccothraustes 431, 454, 485
melanterus, Psarocolius 370, 372
melanura, Anthornis 115, 116, 143, 144, 163
melanura, Climacteris 37, 41
melanura, Coccothraustes 484
melanura, Polioptila 401
melanura, Zosterops 104
melanurus, Passer 523, 528, 533, 534, 535, 537,
565
melanurus, Psaltriparus /0
melba, Pytilia 487, 490, 491, 493, 528, 529
Meliarchus sclateri 770
Melidectes belfordi 770
— fuscus 770
— leucostephes 770
Melidectes nouhuysi 116, 136, 158
— ochromelas 116
— — batesi 136, 158
— princeps 770
— torquatus 770
Melilestes 114, 115, 118, 120, 126, 147
— bougainvillei 769
— megarhynchus 116, 132, 133
— — megarhynchus 119, 120, 147
Meliornis 113, 137, 138, 158
— australasiana 158
— mystacalis 159
— sericea 158
Meliphaga 41, 113—118, 126, 127, 138, 140, 143,
161
— albilineata 769
— albonotata 769
— analoga 115, 118, 123, 150
— — analoga 119, 123, 150
— aruensis 118
— — sharpei 115, 119, 123, 124, 150
— cassidix 128, 153
— chrysops 37, 115, 116, 118, 126, 128
— — chrysops 119, 126, 152, 160*
— — samueli 126, 152
— cratitia cratitia 126, 152
— — halmaturina 126, 152
— fasciogularis 118, 119, 125, 151
— flava 115, 119, 124, 125, 128, 151
— flavicollis 127, 153
— flavirietus 769
— flaviventer 115, 116
— — filigera 117, 118, 128, 153
— — giulianettii 115, 128, 153
— frenata 115, 118, 119, 129, 154
— füsca 125, 127
— — dawsoni 125, 151, 160*
— — flavescens 119, 125, 151
— — fusca 119, 125, 151
— — subgermana 125, 151
— — zanda 125, 151
— gracilis 116, 118, 127
— — gracilis 124, 150
— — imitatrix 124, 150
— inexpectata 769
— keartlandi 126, 152
— leucotis leucotis 119, 127, 153
— — novaenorciae 127, 153
— lewinii 115, 118, 124, 129
— — lewinii 119, 124, 150, 160*
— — nea 124, 150
— macleayana 118, 119, 128, 154
— melanops 119, 127, 128, 131, 153
— — gippslandica 128
— mimikae 769
— notata 115, 118, 123, 124, 150
— — mixta 124, 150
— — notata 119, 124, 150
831
Meliphaga montana 115, 123, 150 mellori, Corvus 696, 725, 758
— obscura 116 mellori, Meliphaga 126, 152
— — obscura 129, 154 melodia, Zonotrichia 167, 168, 188, 189, 190,
— orientalis orientalis 123, 150 195, 197, 214, 237 — 239, 402 —404
— ornata 116, 119, 125, 127, 153 Melophus 165, 166, 521
— penicillata 115, 118 — lathami 168, 224*, 225
— — cearteri 127, 152 — melaniceterus 225
— — geraldtonensis 152 — suberistata 225
— — leilavalensis 127, 152 Melopyrrha 166
— — mellori 126, 152 — nigra 211
— — peniecillata 119 (als perspicillata), 126, 152 — — nigra 260
— perspicillata (statt penicillata) 119 Melospiza 165, 166, 188, 189, 237— 239
— plumula ethelae 125, 752 Melozone 166
— — plumula 125, 152 — biarcuatum biarcuatum 215, 266
— polygramma 769 — — cabanisi 215, 266
— reticulata 769 — kieneri 265, 401, 402
— subfrenata 115, 769 — — kieneri 215, 265
— unicolor 116, 119, 128, 153 — — rubricatum 215, 266
— versicolor 125 — leucotis 770
— — fasciogularis 151 mehroda, Estrilda 490, 493, 502, 5
— — versicolor 125, 151 menachensis, Serinus 774
— vieina 769 mennelli, Serinus 437, 440, 462
— virescens 118, 125 mentalis, Artamus 650, 652
— — forresti 124, 151 mentalis, Certhidea 764, 766
— — virescens 119, 124, 151 mentalis, Cracticus 654, 659, 672*
Meliphagidae 99, 113, 521, 675, 684, 769 mentalis, Icterus £74
Meliphagiden 37, 73, 78, 113, 114, 116, 117,118, Menuroidea 677
120, 123, 124, 128, 130, 134, 139, 144, 146, meridae, Atlapetes 217, 268
222, 537, 681, 704 meridanus, Basileuterus 335, 350
Meliphaginae 113 meridionalis, Amadina 490, 516
Melipotes 136 meridionalis, Sturnella #21
— ater 770 merrilli, Zonotrichia 238
— fumigatus 116 merula, Turdus 197, 279, 281, 288, 384, 454,
— — 137, 158 593, 597 —599, 702, 716
— gymnops 770 merulinus, Cacomantis 96*
Melirrhophetes 136, 158 merzbacheri, Acanthis 472
Melithreptus 116 merzbacheri, Coccothraustes 485
— affinis 131 merzbacheri, Mycerobas 485
— — affinis 131, 155 mesochrysa, Euphonia 772
— albogularis 120, 131, 138 mesochrysus, Basileuterus 335, 349
— — albogularis 119, 130, 155 mesoleuca, Conothraupis 771
— atricapillus 155 mesoleuca, Phaeothlypis 335, 350
— brevirostris 131 mesoleucus, Pipilo 214, 215, 265
— — augustus 130, 154 mesomeles, Icterus 371, 379, £14
— — brevirostris 119, 130, 754 mesopotamicus, Passer 564
— — leucogenys 130, 154, 155 mesoxantha, Zosterops 104
— gularis 118, 119, 131, 155, 160* Metabolus 114
— laetior 131 metallica, Aplonis 592, 594, 595, 603, 609
— — laetior 119, 131, 155 metallica, Hedydipna 56, 82
— Junatus 130, 131 metallicus, Anthreptes 52, 56, 82, 96*
— — chloropsis 130, 155 Metaponia 436
— — lunatus 119, 130, 155 metcalfii, Zosterops 769
— melanocephalus 7155 mevesii, Lamprotornis 591, 596, 597, 612
— validirostris 131 mexicana, Carduelis 267
— — validirostris 131, 155 mexicana, Certhia Z0
melitophrys, Vireolanius 773 mexicana, Coereba 351
mellianus, Oriolus 775 mexicana, Spizella 197, 247
mellivora, Anellobia 163 mexicana, Sturnella 385, 386, 421
832
mexicana, Tangara 279, 280, 291 (z. T. als
mexicanus), 296, 297, 298, 299, 304*, 313,
317
mexicana, Vermivora 324, 339
mexicanus, Carpodacus 174, 430, 431, 448, 477
mexicanus, Cassidix 170
mexicanus, Corvus 754
mexicanus, Gymnomystax 369, 371, 372, 381,
395, 405, 407, 417
mexicanus, Psilorhinus 734
mexicanus, Quiscalus 170, 370, 371, 387, 388,
423, 424, 667
meyeni, Zosterops 103
meyeri, Epimachus 677, 684, 692
meyeri, Philemon 116, 119, 132, 156
Microcorax 754
microleuca, Nectarinia 87
Microligea 350
— palustris 333
— — palustris 346
micropterus, Cuculus 663
microrhyncha, Nectarinia 51, 53, 72, 92
mierorhynchus, Cacicus 377, 412
microstictus, Icterus 369, 379, 414
micrus, Vireo 364
migratorius, Coccothraustes 431, 453, 484, 485,
492*
migratorius, Turdus 402, 593, 702
Miliaria 165
militaris, Leistes 370, 371, 383, 396, 400*, 419,
432
militaris, Pezites 370, 371, 384, 394, 399, 400*,
420
Mimeta 623, 624, 626, 627
Mimidae 114, 285, 403, 450
Mimiden 393
mimikae, Meliphaga 769
Mimus 120, 142, 398, 399, 702
— gilvus 396
— longicaudatus 394
— saturninus modulator 392, 398
miniakensis, Acanthis 471
miniatus, Myioborus 334, 348, 352*
minima, Coereba 322, 354
minima, Nectarinia 51, 53, 62, 85, 96*
minimus, Molothrus 286, 352*, 362, 366, 367,
370, 371, 395, 396, 427, 432*
minimus, Psaltriparus 10, 11, 401
Mino 603, 621
— anais 775
— dumonti 592
— — kreffti 594, 602, 621
minor, Anthreptes 82
minor, Aplonis 595, 607
minor, Artamus 649, 651, 653
minor, Carduelis 442, 465
minor, Cissa 696, 712, 741
minor, Cissopis 305
minor, Climacteris 38, 41
minor, Corvus 722, 752
minor, Dierurus 634, 640
minor, Diuca 202, 253
minor, Estrilda 503
minor, Garrulus 708, 737
minor, Geospiza 262
minor, Lanius 716
minor, Lophorina 685, 693
minor, Loxia 482
minor, Nectarinia 53 (recte traylori), 82
minor, Paradisaea 674, 677, 688, 694
minor, Parus 21
minor, Passerina 116, 222, 276
minor, Phrygilus 200, 251
minor, Ploceus 581
minor, Ptilonorhynchus 667, 670
minor, Pyrenestes 495
minor, Pyrrhula 483
minor, Sturnus 600, 617
minulla, Nectarinia 51, 70, 91
minuta, Euphonia 295, 316
minuta, Sporophila 168, 207, 209, 259, 272*,
396
minuta, Zosterops 769
minutus, Anthoscopus 5, 12, 13
mirabilis, Ammodramus 195, 245
mirabılis, Chloebia 508
mirabilis, Cyanolyca 776
Mirafra erythroptera 169
miranda, Basilornis 775
miranda, Daphoenositta 768
Misteldrossel 702
Mistelfresser 32*, 42
mitrata, Wilsonia 347
mitratus, Parus 6, 18
Mitrospingus cassinii costaricensis 279, 285,
307
— oleagineus 771
mixta, Meliphaga 124, 150
Mniotilta varia 322, 327, 338, 352*
moabiticus, Passer 523, 532, 533, 564
modesta, Aidemosyne 490, 509
modesta, Arachnothera 98
modesta, Progne 303
modesta, Zosterops 769
modestum, Dicaeum 43, 45
modestus, Ploceus 578
modestus, Ramsayornis 115, 117, 118, 138,139,
140, 159, 160*
modestus, Sylviparus 8, 24
modestus, Vireo 352*, 361, 365
modularis, Prunella 5, 449, 542, 543, 598
modulator, Mimus 392, 398
moebii, Nectarinia 74, 94
moesta, Amaurospiza 770
Möwen 666
mohelica, Nectarinia 67, 88
Moho apicalis 770
— bishopi 770
— braccatus 770
— nobilis 770
Mohoua 3
Molothrus 221, 369, 371, 372, 375, 385—388,
391, 393, 395, 398, 399, 403, 404, 408, 409
— aeneus 199, 369, 397, 401, 408
— — aeneus 265, 371, 401, 428
— — assimilis 287, 401, 428, 432*
— — involucratus 228
— — loyei 401, 428
— ater 352*, 363, 370, 371, 394, 398, 401 —404,
408, 409
— — artemisiae 401, 428, 432*
— — ater 352*, 371, 401, 402, 403, 428, 766
— — obscurus 401, 428
— badius 370, 371, 386, 390—393, 398, 409,
703, 766, 767
— — badius 370, 371, 391, 392, 426, 432*,
766
— — fringillarius 369, 391, £26
— bonariensis 219, 221, 270, 366, 369, 370,
376, 377, 334—388, 390— 392, 393, 394, 395,
401, 402, 408
— — aequatorialis 370, 371, 394, 396, 397, 427
— — atronitens 395, 396, 427
— — bonariensis 369, 370, 392 —394, 396,
398, 428, 766
— — brevirostris 427, 428
— — cabanisii 394, 395, 396, 427
— — cassini 396, 427
— — melanogyna 396, 397, 399, 428
— — minimus 286, 352*, 362, 366, 367, 370,
371, 395, 396, 427, 432*
— — oceidentalis 369— 371, 393, 394, 395 — 397,
427
— — purpurascens 427
— — riparius 388, 396, 423, 427
— — sericeus 428
— — venezuelensis 369, 371, 393, 394, 395,
396, 427, 766
— rufoaxillaris 370, 371, 386, 391, 392, 393,
398, 401, 408, 409, 426, 427, 766, 767
molucca, Lonchura 487, 519
moluccensis, Philemon 770
monacha, Oriolus 775
monachus, Artamus 776
monachus, Ploceus 538, 573
monedula, Coloeus 719
monedula, Corvus 695, 696, 698, 701, 714,
717, 719, 721, 724, 750, 751
moneduloides, Corvus 696, 697, 721, 751
mongolica, Rhodopechys 433, 447, 474
monoensis, Zonotrichia 188, 224*, 237
montana, Amblyospiza 497*, 571, 572
montana, Buthraupis 772
montana, Certhia 39
53 Oologie, 40. Lieferung
833
montana, Diglossa 302, 320
montana, Lonchura 774
montana, Meliphaga 115, 123, 150
montana, Sporophila 237
montana, Xenoligea 336, 350
montana, Zosterops 99, 100, 101, 105, 106
montanella, Acanthis 433, 445, 471
montanus, Coccothraustes 433, 454, 186
montanus, Dierurus 775
montanus, ‚Junco 192, 193, 242
montanus, Oreoscoptes 450
montanus, Parus 6, 7, /4, 15, 32*
montanus, Passer 56, 62, 63, 73, 202, 204, 207,
290, 298, 520, 523, 532, 533, 534, 535, 553 bis
555, 566, 567
montanus, Pinicola 450, 480
montanus, Pipilo 214, 264
monteiri, Clytospiza 487, 491, 495
montezuma, Gymnomystax (statt Psarocolius)
371
montezuma, Gymnostinops 381
montezuma, Psarocolius 369, 370, 371 (als
Gymnomystax), 374, 404, 405, 407 —409,
411
Monticola 593
monticola, Geothlypis 332, 346
monticola, Lichmera 769
monticola, Lonchura 774
monticola, Spizella 166, 247
monticolum, Dicaeum 768
monticolus, Parus 6, 7, 22
Montifringilla 445, 517, 519, 522, 536, 717
— adamsi 536
— — adamsi 570
— arctoa 472
— blanfordi 774
— davidiana 536
— — davidiana 570
— mandelli 570
— nivalis 536
— — alpicola 523, 570, 716, 767
— — nivalıs 523, 570
— rufieollis 536
— — ruficollis 570
— taczanowskii 536, 570
— theresae 774
montifringilla, Fringilla 431, 433, 434, 435, 456
montium, Paramythia 42, 44, 48
morcomi, Dendroica 324, 340
moreaui, Nectarinia 70, 91
moreletti, Fringilla 434, 455
morelleti, Sporophila 207, 208, 257
morio, Onychognathus 592, 595, 596, 608*, 609
morio, Psilorhinus 707, 734
morphna, Sporophila 238
mosambicus, Passer 565
Motacilla 72, 128, 139, 171, 176, 183, 195,
199, 201, 212—214, 285, 448, 521
834
Motacilla alba 28, 51, 73, 179, 183, 195, 199, Myioborus torquatus 334, 348
204, 212, 220, 289, 290, 297, 402, 534, 539, Myiodectes 333
546, 547 Myiophobus fasciatus 396
— — yarrellii 531 Myiospiza siehe Myospiza 165, 878
— flava 51, 74, 180 Myiothlypis 349
motacilla, Seiurus 322, 330, 344, 404 Myiozetetes 205
motitensis, Passer 523, 565 — cayanensis 294, 296
mouhoti, Dierurus 641 Myospiza 165 (als Myiospiza), 196, 197, 247, 878
mouroniensis, Zosterops 112 — manimbe 247
moussieri, Phoenicurus 99 — peruana 196
mozambicus, Serinus 430, 433, 434, 436, 438, Myrmecoecichla formieivora 117
459, 460 mysolensis, Aplonis 775
muelleri, Heleia 769 mysorensis, Zosterops 769
muelleri, Oriolus 624, 627 mystacalis, Aethopyga 51, 77, 97
muelleri, Ortygospiza 505 mystacalis, Aimophila 770
multicolor, Saltatricula 218, 269 mystacalis, Cyanocorax 697, 698, 706, 733
multicolor, Spindalis 311 mystacalis, Meliornis 159
Munia 487, 511—515 mystacea, Aplonis 775
— xanthoprymna 514 mysticalis, Rhabdornis 768
munna, Myzomela 121, 148 Myza celebensis 770
muraria, Tichodroma 26, 28, 35 — sarasinarum 770
murina, Pyrrhula 452, 483 Myzantha 141—143, 162
murinus, Parus 24, 764, 378 — garrula 162
murphyi, Zosterops 769 — lutea 163
Musecicapa comitata 550 — obscura 163
— striata 204, 210, 383 Myzomela 78, 115, 117, 118, 121, 123, 141, 161
Museicapidae 53, 114, 523, 524 — adolphinae 769
Muscicapiden 168, 282, 680 — albigula 769
muscicapinus, Hylophilus 352*, 362, 367 — blasii 115, 116, 118, 121, 148
Museigralla brevicauda 394 — cardinalis cardinalis 148
Museisaxicola 359 — — dichromata 122, 149
Muscivora 398, 399 — — kobayashii 122, 149
— forficata 401 — — major 122, 149
— tyrannus 398 — — nigriventris 121, 122, 148
musculus, Anthoscopus 12 — — pulcherrima 122, 148, 160*
musica, Euphonia 279, 293, 294, 295, 315, 316 _— — rubrata (statt rubratra) 149
mussoorienis, Aethopyga 95 — — rubratra 122, 149
mutanda, Sporophila 257 — — saffordi 119, 122, 149
mutus, Saltator 274 — chermesina 769
Mycerobas 430, 454, 485 — cineracea 122
— carniceps merzbacheri 485 — — cineracea 121, 148
Myiobius 114 — cinerea 119, 148
Myioborus 334, 335 — cruentata 769
— albifacies 773 — eichhorni 769
— albifrons 334, 348 ; — eques 119, 148
— brunniceps 773 — — nymani 121, 148
— cardonai 773 — erythrocephala erythrocephala 119, 121, 148
— flavivertex 773 — — infuscata 121, 148
— melanocephalus 773 — — kempi 148
— miniatus 334 — erythromelaena 7149
— — aurantiacus 334, 348 — erythromelas 119, 122, 149
— — hellmayri 334, 348 — jugularis 122, 149
— — miniarıus 334, 348 — kuehni 769
— — pallidiventris 334, 348, 352* — lafargei 769
— — verticalis 334, 348 — malaitae 769
— ornatus chrysops 334, 348 — melanocephala 769
— pariae 773 — nigra 149
— pictus pietus 334, 347 — nigrita 769
Myzomela obscura harterti 121, 122, 148, 160*
— — munna 121, 148
— pulchella 769
— rosenbergiü 769
— rubrata 149
— rufogularis queenslandica 119 (recte zu Co-
nopophila)
— sanguinolenta 115, 122
— — sanguinolenta 121, 148, 160*
— selateri 122, 149
— tristrami 769
— vulnerata 769
nabourup, Onychognathus 594, 595, 609
Nachtigall 541
Nacktschnabelhäher 700
naevia, Locustella 531
naevia, Zoothera 598
nagaensis, Sitta 26, 29
nana, Acanthis 471
nana, Cyanolyca 696, 697, 703, 731
nana, Lonchura 488, 509
nanschanica, Prunella 449
nanschanicus, Coccothraustes 486
nanshanica, Emberiza 226
nanus, Vireo 361, 365
nasesus, Sporophila 259
nasicus, Corvus 696, 723, 736*, 754
natalis, Zosterops 100, 107
nationi, Atlapetes 771
nea, Meliphaga 124, 150
Nebelkrähe 716, 723
nebulosa, Emberiza 170, 225
Necropsar leguati 775
Nectarinia 51, 52, 63, 82
— adelberti 768
— afra afra 53, 69, 90
— — graueri 68, 90
— — saliens 69, 90
— — stuhlmanni 68, 89
— — whpytei 69, 90
— alinae 51
— — alinae 58, 83
— — tanganjicae 58, 83
— amethystina 51, 52
— — amethystina 60, 84
— — deminuta 84
— — kalckreuthi 51, 59, 84
— — kirkii 59, 60, 84
— angladinae 94
— angolensis 59
— asiatica 51, 55, 61, 62 (als C. asiaticus), 64,
66, 67, 76
— — asiatica 66, 83
— — brevirostris 66, 88
— — intermedia 66, 88
— balfouri 768
— bannermani 768
53*
Nectarinia batesi 52, 56, 82
bifasciata 51, 52
— — bifasciata 72, 92
— — microrhyncha 51, 53, 72, 92
— — strophium 51, 72, 92
— (—) tsavoensis 72, 93
bocagii 51, 71, 92
bouvieri 768
buettikoferi 768
calcostetha 50, 52, 55, 68, 76, 86
chalcomelas 768
chalybea 51, 69
— — chalybea 68, 89
— — manoensis 68, 89
— — subalaris 68, 89
chloropygia 51, 70
— — kempi 69, 90
— — Juehderi 69, 70, 90
— — orphogaster 70, 90
coccinigastra 51, 72, 93
comorensis 51, 67, 88
congensis 768
coquerellii 768
cuprea 51, 52 (auch als cupra), 53, 5
— — chalcea 71, 91
— — cuprea 53, 71, 91, 96*
cyanolaema 51
— — eyanolaema 53
— — octaviae 58, 84
dussumieri 52, 64, 86
erythrocerca (auch erythroceria) 51,
93
famosa 51, 68, 71
— — aeneigularis 69, 73, 93
— — cupreonitens 73, 93
— — famosa 73, 94
— — major 78, 93, 94
fuliginosa 51
— — aurea 59, 84, 96*
fusca 51, 53, 68, 73, 89
habessinica 50, 52
— — altera 70, 91, 96*
— — habessinica 70, 91
hartlaubii 768
hasselti 85
humbloti 51
— — humbloti 67, 88
— — mohelica 67, 88
hunteri 61, 85
johannae 51
— — fasclata 74, 94
johnstoni 51
— — johnstoni 74, 94
jugularis 52, 76
— — andamanica 64, 86
— — aurora 65, 87
— — clementiae 52, 65, 87
— — flammaxillaris 64, 65, 86, 87
835
53, 18,
836
Nectarinia jugularis flavigaster 53, 63, 66, 87,
88, 96*
— — flavigastra 88
— — frenata 50, 51, 53, 66, 71 (ohne jugularis),
87
— — heliobleta 87
— — jugularis 65, 87
— — microleuca 87
— — ornata 51, 65, 66 (als ornate), 87
pectoralis 65
— — plateni 65, 87
— — proselia 64, 86
— — rhizophorae 65, 87
— — woodi 65, 87
— — zenobia 87
— kilimensis arturi 51, 74, 94
— — gadowi 74, 94
— — kilimensis 53, 74, 94
— lotenia 51, 62, 66
— — hindustanica 64, 86
— — lotenia 64, 86
— loveridgei 768
— — moreaui 70, 91
— madagascariensis 88
— mariquensis 51
— — mariquensis 53, 72, 92
— — osiris 51, 72, 92
— — suahelica 72, 92
— mediocris 51, 70
— — mediocris 69, 90
— minima 51, 53, 62, 85, 96*
— minulla 51
— — minulla 70, 91
— nectarinioides 52
— — erlangeri 73, 93
— — nectarinioides 73, 93
— neergardi 69, 90
— newtonii 51, 58, 83
— notata moebii 74, 94
— — notata 74, 94
— obscurus (besser obsceura) 82
— olivacea 52, 61
— — alfredi 57, 83
— — cephaelis 53, 57, 82
— — changamwensis 57, 82
— — guineensis 51, 57, 96*
— — obscurus (besser obscura) 82
— — olivacea 53, 57, 83
— — olivacina 83
— — ragazzi 82
— — sclateri 50, 57, 83
— oritis 51
— — oritis 58, 83
— osea 51
— — decorsei 70, 91
— — osea 71, 91
— oustaleti 768
— pectoralis 63, 86
|
|
Nectarinia pembae 72, 93
— preussi 51, 52
— — kikuyensis 69, 90
— — preussi 69, 90
— pulchella 51, 52
— — aegra 73, 93
— — lucidipectus 51, 69 (errore viridipectus),
73, 93, 96*
— — melanogastra 52, 73, 93
— — pulchella 73, 93
— — viridipectus (statt lucidipectus) 69
— purpureiventris 51, 71, 92
— regia 51
— — kivuensis 70, 91
— reichenbachii 50, 52, 58, 83
— reichenowi 51
— — reichenowi 74, 94, 96*
— — shellyae 75, 95
— rockefelleri 768
— rubescens 51
— — rubescens 59, 84
— seimundi minor 82
— — traylori 53 (errore s. minor), 6, 82
— senegalensis 25, 51, 52, 74
— — acik 60, 61, 84
— — aequatorialis 85
— — gutturalis 61, 85, 146
— (—) hunteri 61, 85
— — inaestimata 85
— — lamperti 60, 85, 96*
— — saturatior 51—53, 57 (hinter senegalensis
einfügen), 61, 85
— — senegalensis 60, 61, 84
— sericea 51, 52
— — aspasioides 63, 86
— — auriceps 51, 52, 62, 63, 66, 85
— — caeruleogula 25, 51, 53, 63, 66 (als cae-
ruleigula), 71 (errore jugularis caeruleigula),
86 (als caeruleigula) ß
— — christianae 50, 53, 63, 86
— — corinna 63
— — grayi 62, 85
— — sangirensis 52, 62, 85
— — sericea 63, 86
— shelleyi 51
— — shelleyi 71, 92
— solaris 768
— souimanga 51, 67
— — aldabrensis 67, 88
— — apolis 66, 88
— — souimanga 53, 66, 88
— sperata 50
— — brasiliana 52, 62, 64, 85
— splendidus (besser splendida) 93
— superba 50, 51
— — ashantiensis 74, 94, 96*
— — buvuma 74, 94
— — nigeriae 74, 94
Nectarinia superba superba 53, 74, 94
— tacazze 51
— — jacksoni 71, 92, 96*
— — tacazze 53, 71, 91
— talatala 51, 53, 57, 60, 67, 73, 89
— thomensis 51, 58, 83
— tsavoensis 72, 93
— ursulae 51, 57, 83
— venusta 25, 51, 58, 67, 68
— — albiventris 67, 89
— — falkensteini 67, 89
— — igneiventris 67, 89, 96*
— — niassae 89
— — venusta 67, 74, 88
— veroxi 52
— — fischeri 58, 83
— — veroxi 50, 52 (als Art), 58, 83
— verticalis 51
— — bohndorffi 58, 83
— — ceyanocephala (als Cinnyris) 52, 83
— — viridisplendens 58, 84
— violacea 50, 51, 53, 70, 91
— zeylonica flaviventris 61, 85
— — zeylonica 61, 85
Nectariniidae 25, 50, 52, 114, 146, 521, 768
Nectariniden 50—52, 63, 66, 67, 70, 75, 76
Nectariniinae 52
nectarinioides, Nectarinia 52, 73, 93
neergardi, Nectarinia 69, 90
neglecta, Sitta 30
neglecta, Sturnella 215, 386, 421
neglectus, Anthreptes 768
neglectus, Cinnyris 82
neglectus, Coloeus 719
neglectus, Corvus 751
neglectus, Parus 17
neglectus, Philemon 133, 756
. neglectus, Ploceus 576
nehrkorni, Dicaeum 768
Neisna 487
Nektarvögel 50, 53, 96*
nelicourvi, Ploceus 519, 521, 547, 581
Nelieurvius 518, 547, 581
nelsoni, Ammedramus 195, 245
nelsoni, Cissilopha 703, 732
nelsoni, Geothlypis 773
nelsoni, Icterus 370, 379, 415
nelsoni, Sitta 31
nelsoni, Vireo 773
nemoricola, Leucosticete 433, 445, 472
nemoricola, Sturnus 599, 615
Nemosia 278, 284
— guira 279, 306
— pileata 281, 306
— — surinamensis 282, 284, 306
— rourei 771 ü
neobscura, Emberiza 174, 227
Neochloe 363
837
Neochmia phaeton 487
— — albiventer 506
— — phaeton 490, 506
— ruficauda clarescens 490, 506
— — ruficauda 506
Neoecichla gutturalis angusta 598, 613
Neomorpha 645
Neorhynchus 208, 209, 259
Neositta 25, 28
— chrysoptera albata 28 (ohne chrysoptera),
35
— — chrysoptera 34
— — lathami 32*, 34
— — leucocephala 34
— — leucoptera 35
— — lumholtzi 34, 35
— — pileata 34
— — striata 35
— papuensis 768
Neospiza concolor 774
Neothraupis fasciata 771
nepalensis, Tichodroma 35
Nephelornis oneilli 773
'Nesacanthis 585
Nesocharis ansorgei 490, 491, 492
— capistrata 774
— shelleyi 487, 491
— — shelleyi 492
nesophilus, Carpodacus 433, 448, 476
nesophilus, Thraupis 291, 292, 304*, 312
Nesopsar 370
— nigerrimus 381, 416
Nesospingus 278, 280
— speculiferus 281, 283, 305
Nesospiza 116
— acunhae 202
— — acunhae 253
— wilkinsi 771
neumanni, Phonygammus 682, 691
neumayer, Sitta 25/26, 27, 28, 31, 764
Neunhandschwingige (Singvögel) 3, 165, 517
Neuseeland-Lappenvögel 645
neutralis, Agelaius 418
nevadae, Aphelocoma 702, 731
nevadensis, Agelaius 4/7
nevadensis, Ammodramus 194, 244
nevadensis, Amphispiza 199, 249
nevermanni, Lonchura 774
newtoni, Coereba 353
newtoni, Nectarinia 51, 58, 83
newtoni, Parus 20
newtoniana, Prionodura 663, 665, 666, 670
niassae, Nectarinia 89
niassae, Zosterops 99, 710
niassensis, Uraeginthus 487, 490, 491, 500
nicaraguensis, Quiscalus 370, 389, 424
nicobarica, Zosterops 104
niediecki, Carduelis 268
838
niger, Bubalornis 529, 559
niger, Certhionyx 116, 117, 119, 123, 141, 149,
160*
niger, Parus 6, 7, 19, 32*
niger, Quiscalus 370, 371, 390, 425, 432*
nigeriae, Malimbus 549
nigeriae, Nectarinia 74, 94
nigerrimus, Nesopsar 381, 416
nigerrimus, Ploceus 497*, 519, 523, 545, 546,
579
nigra, Astrapia 776
nigra, Melanocharis 768
nigra, Melopyrrha 211, 260
nigra, Myzomela 149
nigra, Phylidonyris 138, 158, 159
nigrans, Euphagus 391, 426
nigrescens, Ammodramus 195, 245
nigrescens, Certhia 40
nigrescens, Dendroica 322, 327, 342
nigrescens, Dicrurus 641
nigricans, Coccothraustes 453, 484
nigricans, Sayornis 401
nigricapillus, Perisoreus 709, 739
nigricephala, Spindalis 280, 290, 312
nigriceps, Donacola 515
nigriceps, Lonchura 490 (errore sub poensis),
5310, 767
nigriceps, Ploceus 519, 523, 527,
nigriceps, Serinus 430, 437, 457
nigricollis, Euphonia 294
nigricollis, Passer 562
nigricollis, Ploceus 519, 520, 521, 529, 539, 546,
BY]
nigricollis, Sporophila 208, 258
nigricollis, Sturnus 592, 594, 601, 619
nigrifrons, Dendroica 329, 343
nigrifrons, Euplectes 587
nigrifrons, Malimbus 549, 584
nigrifrons, Ploceus 523, 543, 578
nigrilora, Parula 324, 339
nigrilore, Dicaeum 768
nigriloris, Estrilda 774
nigrimentum, Dicaeum 47
nigrimentum, Ploceus 775
nigripennis,; Oriolus 775
nigripes, Dacnis 773
nigrirostris, Cyclarhis 773
Nigrita bicolor 490
— — bicolor 492
— — brunnescens 490, 492
— canicapilla 488
— — emiliae 487, 492
— — intermedia 487, 491, 492
— — schistacea 487, 488, 492
— — sparsimguttata 487, 492
— fusconota fusconota 490, 492
— Jluteifrons 487
— — luteifrons 492
545, 579
nigrita, Myzomela 769
nigriventer, Sitta 27, 34
nigriventris, Myzomela 121, 122, 148
nigro-aurantia (recte nigroaurantia), Sporo-
phila 259
nigrocincta, Tangara 773
nigrocincta, Tangara (recte nigroviridis) 280
nigrocristatus, Basileuterus 334, 349
nigrogenis, Paroaria 270
nigrogularis, Cracticus 654, 656, 659, 660
nigrogularis, Icterus 371, 379, 473
nigrogularis, Ramphocelus 370
nigrorufa, Poospiza 167, 203, 254
nigrorufa, Sporophila 770
nigrorum, Zosterops 769
nigrostriata, Emberiza 176, 224*, 228
nigrotecta, Poephila 507
nigrotemporalis, Ploceus 572
nigroventris, Euplectes 519, 520, 522, 552, 586
nigroviridis, Tangara 280 (errore nigrocinc-
ta), 297, 299, 319, 878
nilgiriensis, Zosterops 104
niloticus, Passer 562
nipalensis, Aethopyga 51, 53, 75, 95
nipalensis, Carpodacus 430, 447, 475
nipalensis, Certhia 37, 40, 768
nipalensis, Parus 6, 27
nipalensis, Pyrrhula 431, 433, 451, 482
nisoria, Lonchura 512
nisoria, Sylvia 380
nitens, Lamprotornis 594, 596, 597, 611
nitens, Malimbus 520, 521, 523, 349, 583
nitens, Phainopepla 401
nitida, Aplonis 595, 609
nitidissima, Chlorochrysa 772
nitidula, Lagonostieta 487, 498
nitidula, Mandingoa 487, 490, 493
nitidus, Cyanerpes 773
nivalis, Montifringilla 523, 536, 570, 716, 767
nivalis, Plectrophenax 167, 187, 188, 235, 236
niveogularis, Aegithalos 4, 10
niveoguttatus, Hypargos 490, 495
nobilior, Sturnus 600, 617
nobilis, Moho 770
noctis, Loxigilla 212, 262
Nonnenvögel 487
nonnula, Estrilda 503
Nonpasseres 674
nordmanni, Lamprotornis 593, 597, 611
notabilis, Anisognathus 772
notabilis, Lichmera 769
notabilis, Phylidonyris 770
notabilis, Seiurus 344
notata, Carduelis 430, 434, 444, 466
notata, Meliphaga 115, 118, 119, 123, 124, 150
notata, Nectarinia 74, 94
notatus, Oriolus 624, 625, 628
Notiomystis 115
Notiomystis cinceta 115, 117, 156
— — hautura 132, 156
Notiopsar 387
— aterrimus 422
notostieta, Aimophila 770
nouhuysi, Melidectes 116, 136, 158
novaanglica, Corvus 758
novaeguineae, Philemon 113, 116, 119, 133,
134, 135, 156, 157
novaeguineae, Toxorhamphus 769
novaeguineae, Zosterops 106, 107
novaehollandiae, Phylidonyris 119 (errore als
Ph. v. nov.), 131, 137, 158, 160*
novaenorciae, Meliphaga 127, 153
novaeseelandiae, Anthus 202
novaeseelandiae, Prosthemadera 115, 116, 145,
160*, 164
noveboracensis, Seiurus 322, 330, 344
noveboracensis, Vireo 359, 360, 364
novicius, Chlorospingus 284, 306
nubicolus, Parus 22
nubicus, Lanius 651, 712 £
nuchale, Hypogramma 56, 82
nuchalis, Anthreptes 82
nuchalis, Chlamydera 663, 668, 671, 672*
nuchalis, Parus 768
Nucifraga 695—697, 700, 705, 709, 714, 716,
717, 719, 721
— caryocatactes 717
— — .earyocatactes 697, 698, 717, 720*, 748
— — hemispila 698, 717, 749
— — japonica 697, 717, 748
— — macella 697, 698, 717, 748
— — macrorhynchos 717, 748
rothschildi 717, 748
— columbiana 717, 748
nudicollis, Procnias 375 _
nuttalli, Pica 696, 698, 715, 746
nuttalli, Zonotrichia 191, 242
nyansae, Bubalornis 559
nyansae, Estrilda 488, 502
nyassae, Estrilda 503
Nyetidromus 114
nyikae, Ploceus 538, 572
nymani, Myzomela 121, 148
oatesi, Garrulus 708, 738
oberi, Icterus 381, 416
Oberholseria 213, 263
obiensis, Lycocorax 667, 678, 690
obiensis, Manucodia 675, 679, 680, 681, 687, 690
obscura, Aphelocoma 701, 730
obscura, Emberiza 227
obsceura, Manorina 140, 142, 143, 162
obscura, Meliphaga 129, 154
obscura, Myzantha 163
obscura, Myzomela 121, 122, 148, 160*
obscura, Nectarinia (als obscurus) 82
839
obscura, Sporophila 207, 208, 258
obscura, Thraupis 280 (errore boliviana), 291,
312, 378
obscurus, Cinnyris 82
obscurus, Hemignathus 773
obscurus, Molothrus 401, 428
obscurus (besser obscura), Nectarinia 82
obscurus, Oreornis 154
obsceurus, Parus 23
obscurus, Perisoreus 696, 709, 739
obscurus, Quiscalus 371
obsoleta, Rhodopechys 430, 433, 441, 447, 475,
535
obtusa, Vidua 523, 525, 528, 529, 558
ocai, Pipilo 213, 214, 263
occidentalis, Catharus 217
occidentalis, Dendrocitta 698, 713, 743
occidentalis, Dendroica 327, 342
oceidentalis, Estrilda 488, 502
occidentalis, Geothlypis 331, 345, 428, 432
occidentalis, Molothrus 369— 371, 393, 394,
395397, 427
occidentalis, Oryzoborus 210, 260
occidentalis, Parus /5
oceidentalis, Tersina 281, 302, 320
occidentalis, Zosterops 104
occipitalis, Chlorophonia 281, 316
occipitalis, Dendrocitta 690, 713, 714, 743
oceipitalis, Urocissa 697, 698, 710, 711, 740
ocellata, Sporophila 258
ochracea, Spizella 197, 247
ochraceiceps, Hylophilus 359, 368
ochraceiventris, Saltator 274
ochromelas, Melidectes 116, 136, 158
ochruros, Phoenicurus 196, 219
octaviae, Nectarinia 58, 84
ocularis, Lichmera 119, 120, 147, 160*
ocularis, Ploceus 520, 521, 523, 538, 539, 373,
574
oculata, Emblema 487, 506
Oculocincta squamifrons 769
Odontospiza caniceps 509
Oedistoma 118
— iliolophum 116, 878
— — fergussonis 120, 147 (als iliophorum)
— pygmaeum 115
— — meeki 120, 747
Oenanthe leucura 183
— oenanthe 551
Offenbrüter 523, 524
oleaginea, Pipromorpha 296
oleaginea, Rukia 769
oleagineus, Mitrospingus 771
oleagineus, Psarocolius 371, 394, 400*, £10
olinda, Climacteris 21
olivacea, Carduelis 774
olivacea, Certhidea 213, 263, 764, 766
olivacea, Chlorothraupis 771
840
olivacea, Nectarinia 51—53, 57, 61, 82, 83
olivacea, Pachycephala 144
olivacea, Piranga 280, 281, 288, 310
olivacea, Tiaris 168, 211, 260, 261
olivacea, Zosterops 112
olivaceiceps, Ploceus 520, 549, 775
olivaceum, Dicaeum 42, 46
olivaceus, Linurgus 430, 441, 463
olivaceus, Ploceus 540, 574
olivaceus, Prionochilus 768
olivaceus, Vireo 352*, 359, 361, 362, 366,
399, 403, 404
olivacina, Nectarinia 83
olivascens, Basileuterus 335, 349, 352*
olivascens, Embernagra 205, 256, 272*
olivascens, Saltator 167, 274
olivascens, Sicalis 166, 204, 255
olivetorum, Hippolais 58, 174
olivina, Schistochlamys 282, 305
ombriosus, Parus 23
omissa, Tiaris 168, 261
oneilli, Nephelornis 773
ÖOnychognathus 591, 595
— albirostris 592 —594, 596, 610
— biythii 591, 592, 595, 596, 610
— frater 775
— fulgidus 775
— minor 592, 596
— — minor 595, 596, 608*, 609
— — rueppellii 594, 595, 609
— nabouroup nabouroup 594, 595, 609
— salvadorii 596, 604, 610, 775
— tenuirostris 592, 596
— — theresae 592, 596, 610
— tristrami 596, 610
— walleri elgonensis 591, 595, 609
oocleptica, Aphelocoma 701, 730
opaca, Aplonis 595
ophthalmica, Sporophila 257
Oporornis 332, 346
oppenheimi, Sturnus 600*
Orchesticus 278, 280
— abeillei 282, 305
oreganus, Junco 192, 242
oreganus, Pipilo 264
orenocensis, Saltator 292%, 272*, 274
Oreocharis arfaki 768
Oreomanes fraseri 773
oreophila, Catamenia 770
Oreopsar 321
— bolivianus 388, 423
Oreornis 312
— chrysogenys 116, 119, 129, 154
— obscurus 154
ÖOreoscoptes montanus 450
Oreospiza 165, 213, 263
Oreosterops 109
Oreostruthus fuliginosus 774
Oreothlypis 339
Oreothraupis arremonops 771
orestera, Vermivora 323, 338
oriantha, Zonotrichia 241
orientalis, Anthreptes 51, 52, 55, 81
orientalis, Chlamydera 668, 671, 672*
orientalis, Corvus 723, 755, 756
orientalis, Emberiza 167, 183, 224*, 232
orientalis, Lonchura 509, (als Munia) 513
orientalis, Manucodia 680, 685, 690
orientalis, Meliphaga 123, 150
orientalis, Munia (recte Lonchura) 513
orientalis, Vidua 528, 529, 558
Oriolidae 623, 654, 675, 775
Oriolini 677
Oriolus 385, 535, 542, 623, 626, 631, 681
oriolus, Oriolus 130, 205, 218, 221, 359, 405,
608*, 623, 624, 625, 627, 628, 647, 678
Oriolus 623, 626, 631
— albiloris 775
— auratus 623, 625
— — auratus 624, 628
— — notatus 624, 625, 628
— bouroensis 775
— brachyrhynchus 775
— chinensis 625
— — acrorhynchus 628
— — andamanensis 625, 628
— — celebensis 623, 625, 629
— — chinensis 623, 625, 628
— — diffusus 625, 628
— — indicus 628
— — maculatus 625, 628
— — tenuirostris 625, 626, 628
— chlorocephalus 775
— crassirostris 775
— cruentus cruentus 6926, 629 \
— flavocinctus 624
— — flavocinctus 624, 627
— — muelleri 624, 627
— forsteni 775
— hosii 775
— isabellae 775
— larvatus 623
— — larvatus 625, 629
— — rolleti 625, 629
— mellianus 775
— monacha 775
— nigripennis 775
— oriolus 205, 218, 221, 359, 405, 625, 647,
678
— — kundoo 623, 624, 628
— — oriolus 608*, 623, 624, 627
— phaeochromus 775
— sagittatus 623, 624, 666
— — affinis 624, 627
— — sagittatus 623, 624, 627
— striatus 627
Oriolus szalayi 623, 627
— traillii traillii 623, 626, 629
— viridifuscus 775
— viridis 627
— xanthonotus xanthonotus 624, 627
— xanthornus ceylonensis 626, 629
— — madaraspatanus 629
— — xanthornus 608*, 623, 624, 625, 629
oritis, Nectarinia 54, 58, 83
Oriturus 165, 166
— superciliosus 200, 251
orix, Euplectes 518, 519, 522, 528, 540, 550,
392, 587
ornata, Emberiza 168, 182, 224*, 231
ornata, Meliphaga 116, 119, 125, 127, 153
ornata, Nectarinia 51, 65, 66 (als ornate), 87
ornata, Poospiza 770
ornata,Sporophila 258
ornata, Thlypopsis 771
ornata, Thraupis 292, 313
ornata, Urocissa 696, 698, 710, 740
ornatus, Äuriparus 13, 32*
ornatus, Calcarius 187, 235
ornatus, Lamprotornis 775
ornatus, Myiobius 334, 348
ornatus, Pardalotus 44, 48
orphogaster, Nectarinia 70, 90
orru, Corvus 698, 721, 724, 736*, 758
Orthogonys 278
— chloriceterus 771
Orthonychinae 3
ortizi, Incaspiza 770
Ortolan 174
Ortygospiza 487 —489
— atrieollis atricollis 505
— — muelleri 505
— — polyzona 505
— gabonensis 774
— locustella irisae 505
— — locustella 489, 505
Oryziborus 166, 206, 291
— angolensis funereus 168, 210, 260
— — torridus 210, 260
— cerassirostris crassirostris 210, 260, 272*
— — occidentalis 210, 260
oryzivora, Padda 490, 515
oryzivora, Scaphidura 370, 371, 374, 375, 381.
404, 405, 407, 408, 429, 432*
oryzivorus, Dolichonyx 194, 371, 409, 429, 432*
osai, Corvus 724, 756
osburni, Vireo 361, 365
osea, Nectarinia 51, 70, 71, 91
oseryi, Psarocolius 773
osiris, Nectarinia 51, 72, 92
ossifragus, Corvus 698, 754
Ostblauhäher 701
Ostinops 373, 410
— atrocastaneus 210
841
Ostinops australis £10
ostrinus, Pyrenestes 488, 490, 294
Othyphantes 517, 518, 537, 572, 573
Otididae 654
otiosus, Dicrurus 632, 638, 644
Otis tetrax 655
oustaleti, Nectarinia 768
oweni, Chlamydera 668
owstoni, Zosterops 100, 105
pacatus, Pinicola 450, 480
Pachycephala olivacea 144
— pectoralis 489
— — graeffii 489
Pachyphantes 518, 548
— pachyrhynchus 581
pachyrhynchus, Pachyphantes 581
Pachysilvia (als Pachysylvia) 367
Pachysylvia (errore für Pachysilvia) 367
pacifica, Drepanis 773
pacificus, Perisoreus 709, 739
Padda 488
— fuscata 774
— oryzivora 490, 515
Padda-Reisfinken 488
pagodarum, Sturnus 592, 600, 615
palauensis, Rukia 769
pallasi, Emberiza 168, 185, 233
pallens, Vireo 773
pallescens, Corvus 755
pallescens, Cyanopica 697, 712, 742
palliatus, Junco 166, 193, 243
palliatus, Psilorhinus 707, 734
pallida, Carduelis 467
pallida, Dendrocitta 698, 712, 713, 720*, 742
pallida, Lonchura 514
pallida, Spizella 198, 248, 404
pallida, Zosterops 96*, 100, 111
pallidiceps, Atlapetes 771
pallidigaster, Anthreptes 768
pallidinucha, Atlapetes 771
pallidior, Emberiza 234
pallidior, Passerina 277
pallidipectus, Hylophilus 368
pallidiventris, Myioborus 334, 348, 352*
pallidiventris, Parus 6, 20
pallidus, Camarhynchus 765, 766
pallidus, Cuculus 117, 124
pallidus, Ploceus (errore für subaureus aureo-
flavus) 523
palmae, Fringilla 434, 455
palmarum, Corvus 722, 754
palmarum, Dendroica 322, 329, 343
palmarum, Phaenicophilus 284, 306
palmarum, Thraupis 281, 291, 292, 304*, 313
palmeri, Loxioides 773
palmeri, Tangara 772
Palmeria dolei 773
842
palpebrosa, Zosterops 96*, 99, 100, 103, 104
paludicola, Dendroica 328, 342, 343
paludicola, Estrilda 489, 502, 526
palustris, Acrocephalus 354, 380, 534
palustris, Microligea 333, 346
palustris, Parus 6, 7, 13, 14, 32*
palustris, Pyrrhulorhyncha 234
palustris, Quiscalus 370, 389, 423, 424
palustris, Sporophila 239, 770
pammelaina, Melaenornis 178
panayensis, Aplonis 592, 594, 595, 509
panderi, Podoces 709, 716, 747
Panurus 57
— biarmieus 376
papuana, Erythrura 774
papuensis, Archboldia 776
papuensis, Chaetorhynchus 633, 638
papuensis, Neositta 768
par, Emberiza 168, 172, 173, 226
Paradieskrähe 678
Paradiesvögel 672*, 673, 674, 676—678, 683,
686
Paradieswitwen 329, 489, 529
Paradigalla carunculata 776
— (carunculata) brevicauda 684, 692
Paradisaea 673, 674, 676-678, 682, 683,
684 — 686, 688
— apoda 677, 682, 686, 688, 693
— — apoda 677, 686, 693
— — augustaevictoriae 677, 683, 687, 688, 694
— — raggiana (auch als Art) 685, 687, 693, 694
— decora 776
— guilielmi 677, 688, 694
— minor finschi 677, 688, 694
— — minor 674, 677, 688, 694
— raggiana (s. oben apoda r.) 680, 682, 687,
693, 694
— rubra 672*, 677, 688, 694
— rudolphi 675, 676, 683
— — margaritae 689, 694
— — rudolphi 688, 694
paradisaea, Steganura 491, 527, 528
paradisaea, Vidua 523, 526, 528, 529, 558
Paradisaeidae 645, 663, 664, 673, 674, 675, 677,
678, 776
Paradisaeiden 675
Paradisaeinae 673
Paradisea 673
paradisea, Tangara 280, 282, 297, 317
Paradiseidae 674, 684
paradiseus, Dierurus 114, 608*, 632, 633, 637,
638, 644
paradiseus, Ptiloris 676, 677, 683, 691
paradisi, Hemispingus 771
paradoxa, Anthochaera 116, 118, 131, 145, 164
Paradoxornis 5
paraguayensis, Dacnis 299, 766
Paramythia 42
Paramythia montium 42
— — alpinum 44, 48
Pardaliparus 6, 78
Pardalotus 42, 44, 113
— affinis 48
— assimilis 48
— melanocephalus barroni 49
— — bowensis 49
— — melanocephalus 49
— — uropygialis 49
— ornatus 44, 48
— punctatus 48 (als punctatos)
— quadragintus quadragintus 48
— rubricatus parryi 8
— — rubricatus 44, 48
— striatus 48
— substriatus 44, 48
— xanthopygus 48
parellina, Passerina 223, 276
pariae, Myioborus 773
Paridae 3—6, 13, 25, 26, 36, 44, 279, 524, 768
parina, Xenodacnis 773
Parinia 112
parisorum, Icterus 378, 416
parkini, Passer 563
Parmoptila 487
— woodhousei rubrifrons 290
— — woodhousei 492
Paroaria 165, 166, 219, 398, 399
— baeri 771
— capitata capitata 168, 270
— coronata 269
— cristata 269
— cucullata 269
— dominicana 167, 269
— gularis 396
— — cervicalis 270
— — nigrogenis 270
— larvata 269
paropanisi, Carduelis 433, 469
Paroreomyza maculata maculata 356, 357
— — mana 356. 357
Parotia 676, 678, 683, 686
— carolae 776
— lawesii helenae 676, 686, 693
— — lawesii 676, 677, 686, 693
— sefilata 776
— wahnesi 776
parryi, Pardalotus 48
pars, Arachnothera 78, 98
particeps, Lonchura 512
Parula 324
— americana 322, 324, 339
— pitiayumi 322
— — elegans 324, 340, 352*
— — nigrilore 324, 339
— — pitiayumi 324, 340
— pusilla 339
843
Parulidae 192, 213, 214, 278, 279, 302, 321, Parus damarensis 19
329, 335, 393, 398, 401, 403, 530, 766, 773 — davidi 768
Parus 3, 6, 25, 27, 36, 51, 52, 56, 200, 206, 294, -—- dichrous 6
321, 327, 330, 385, 763 — — kangrae 19
— afer afer 6 u.7 (als P. afer), 19 — elegans (? elegans) 1&
— — cinerascens 7, 19 — fasciiventer 768
— albiventris 19 — funereus 7
— amabilis 768 — — funereus 20
— ater 7 — fringillinus 20
— — aemodius 6, 7, 1/8 — gambeli 7
— — ater 6, 17, 18 — — abbreviatus /6
— — britannicus 7, 18 — — atratus 16
— — chorassanicus /8 — — baileyae 76
— — cypriotes 18 — — gambeli 76
— — hibernicus 18, 32* — — grinnelli 76
— — insularis 78 — — inyoensis 16
— — ledouci 18 — griseiventris 7, 19
— — pekinensis 7/8 — holsti 764
— — phaeonotus 18 — hudsonieus hudsonicus /7
— — rapinensis 7/7 — — littoralis 17
— — rufipectus /8 — inornatus 7
— atricapillus agilis 75 — — inornatus 24, 764
— — atricapilloides 75 — — murinus 24, 764, 878
— — atricapillus 15 — — ridgwayi 24
— — oceidentalis 75 — — sequestratus 24
— — septentrionalis 15 — — transpositus 24, 878
— bicolor 6 — leucomelas 7
— — atrieristatus 24 — — insignis 19
— — sennetti 24 — — leucomelas 79
— bokharensis 7 — leuconotus 768
— — bokharensis 6, 22 — lugubris 7, 763, 764, 768
— — ferghanensis 22 — — anatoliae 7/4, 763
— caeruleus 7, 8 — — hyrcanus 763
— — caeruleus 6, 7, 23, 764 — — lugens 74
— — degener 764 — — lugubris 14, 764
— — obscurus 23 — major 7, 14, 27, 205, 295, 336, 596, 714
— — ombriosus 23 — — aphrodite 20
— — persicus 23 — — artatus 21
— — satunini 23 — — einereus 21, 27
— — teneriffae 23 — — commixtus 7, 21, 27
— — ultramarinus 23 — — corsus 20
— carolinensis carolinensis 7/6 — — excelsus 20
— — extimus 6, 16 — — fohkiensis 21
— — impiger 16 — — mahrattarum 21
— ceinctus cinetus 16, 878 — — major 7, 20, 297, 763, 764
— — lapponicus 16, 878 — — mallorcae 20
— — lathami 76 — — minor 21
— cinerascens (recte afer c.) 6 — — newtoni 20
— cristatus 7, 8, 27, 36, 205 — — nipalensis 6, 27
— — brunnescens 7/8 — — nubicolus 22
— — cristatus 18 — — stupae 2]
— — mitratus 6, 18 — — tibetanus 22
— — seotieus /9 — — vauriei 21
— — weigoldi 19, 32* — — wladiwostokensis 27
— cyanus cyanus 6, 7, 23 — — ziaratensis 21
— — flavipectus 6, 7, 24 — melanolophus 6, 7, 17, 32*
— — tianschanieus 6, 24 — montanus 7
— — yenisseensis 24 — — affinis 15
S44t
Parus montanus baicalensis 6, 15
— — borealis 14
— — kamtschatkensis 15
— — kleinschmidti 75
— — montanus 14
— — restrietus 15, 32*
— — rhenanus 7, 14
— — salicarius 6, 7/4
— — songarus 6, 15
— monticolus 6, 7
— — insperatus 22
— — lepcharum 22
— — yunnanensis 6, 22
— niger 6
— — niger 7, 19, 32*
— nuchalis 768
— palustris 7
— — brevirostris 14
— — communis 6, 13, 14
— — crassirostris 14
— — dresseri /4
— — fruticeti 13
— — italicus 14
— — korejevi 14
— — longirostris 14
— — palustris 13, 14, 32*
— rubidiventris beavani 6, 7, 17
— — rufonuchalis 6, 7, 17
— rufescens barlowi 17
— — neglectus 17
— — rufescens 17
— rufiventris masukuensis 20
— — pallidiventris 6, 20
— — rufiventris 20
— rufonuchalis 17
— sclateri eidos /6
— semilarvatus 768
— spilonotus rex 7, 23
— — spilonotus 22
— — subviridis 22
— superciliosus 7, 16
— varius 7
— — varius 24
— venustulus 7, 18
— wollweberi 7
— — annexus (besser Art a. ?) 17
— — phillipsi 17
— xanthogenys 7, 8, 27
— — aplonotus 22
— — haplonotus 22
— — travancorensis 22
— — xanthogenys 6, 22
parva, Carduelis 468
parva, Porzana 283, 685
parva, Sporophila 207, 259
parva, Viridonia 355, 357
parvirostris, Atlapetes 216, 267
parvirostris, Chlorospingus 771
parvula, Dendrocitta 712, 743
parvulus, Anthoscopus 12
parvulus, Camarhynchus 213, 263, 765
parvus, Icterus 380, 415
parzudaki, Tangara 772
pascuus, Corvus 722, 754
Passer 51, 59, 64, 176, 183, 200, 205, 206, 210,
211, 219, 279, 296-299, 325, 390, 399, 409,
441, 517—520, 522, 527—529, 531—536,
547, 553 —555
ammodendri 520, 531
— ammodendri 561
— korejewi 561
— stoliczkae 523, 561
castanopterus 532, 774
— castanopterus 563
cinnamomeus (s. P. rutilans c.) 54
diffusus 566
domesticus 61, 63, 70, 73, 74, 402, 519—521,
529, 532—536, 548, 550, 553, 555
— arboreus 562
— bactrianus 523, 562
— balearoibericus 561
— biblieus 532, 562
— domesticus 523, 531, 534, 561
— griseigularis 562
— hyrcanus 532, 562
— indicus 496*, 523, 532, 562
— italiae 532, 561
— nigricollis 562
niloticus 562
— parkini 563
— rufidorsalis 532, 562
— tingitanus 532, 562
eminibey 516, 520, 534, 568
enigmaticus 532
flaveolus 523, 533, 564
griseus 528, 532, 533, 534
— abyssinicus 565
— gongonensis 565
— griseus 523, 565, 566
— mosambicus 565
— swainsonii 565
— ugandae 566
hispaniolensis 69, 532, 534
— hispaniolensis 532, 563
— transcaspicus 523 (als transcaspius), 532,
563
iagoensis 520, 534, 556
— benguellensis 565
— jagoensis 565
— motitensis 523, 565
— rufocinctus 533, 564
— shelleyi 533, 564
luteus 520, 534
— euchlorus 534, 568
— luteus 534, 568
melanurus 528, 534, 535, 537
|
Passer melanurus damarensis 523, 533, 565
— — melanurus 523, 533, 565
— — vicinus 523, 333, 365
— moabiticus 532, 533
— — mesopotamicus 564
— — moabitieus 564
— — yatii 523, 564
— montanus 56, 62, 63, 73, 202, 204, 207,
290, 298, 520, 532, 534, 535, 553—555
— — catellatus 566
— — dilutus 534, 567
— — dybowskii 534, 567
— — kansuensis 534, 567
— — malaccensis 523, 534, 567
— — montanus 523, 533, 534, 566, 567
— — saissanensis 534
— — saturatus 567
— — taivanensis 567
— — tibetanus 534, 567
— — zaissanensis 534, 567
— pyrrhonotus 496*, 532, 563
— rutilans einnamomeus 54 (als P. c.), 523,
563
— — debilis 563
— — rutilans 564
— — schaeferi 532, 364
— simplex 533, 534
— — saharae 566
— — simplex 566
— — zarudnyi 566
Passerculus 165, 191, 194, 195, 243, 244
— guttatus 244
— rostratus 195, 244
— — guttatus 195
— sandwichensis 244
Passerella 165, 166, 188, 236, 237
— townsendi 236
Passeres (Passeriformes) 25
Passerherbulus 195, 196, 246
— caudacutus 196, 246
Passeriformes 3, 25 (Passeres), 699, 768
Passerina 165 — 167, 403
— amoena 293, 277
— brissonii argentina 168, 222, 223, 276
— — brissonii 292, 276
— — minor 166, 222, 276
— — sterea 168, 223, 276
— caerulea 223
— — caerulea 276
— — chiapensis 277
— — eurhyncha 276, 277
— — interfusa 276
lazula 277
— — salicaria 276, 277
— caerulescens 771
— ceiris 293
— — eiris 272*, 277
— — pallidior 277
845
Passerina cyanea 168, 223, 277, 404
— — caucae 394
— — minor 394
— ceyanoides 166
— — cyanoides 167, 222, 276
— — rothschildi 168, 222, 276
— — toddi 167, 222, 275
— glaucocaerulea 222, 275
— leclancheri 771
— parellina parellina 223, 276
— rositae 166, 223, 275
— versicolor 223, 277, 402
passerina, Ammodramus (heute Spizella) 166,
189
passerina, Emberiza 234
passerina, Spizella 165; 166 u. 189 (als Ammo-
dramus); 197, 198, 203, 224*, 247, 403, 404
Passerinae 517, 522
passerinii, Ramphocelus 281, 289, 311, 401
passerinus, Coturniculus 246
pastinator, Corvus 722, 753
Pastor 591, 600, 601, 616
patagonieus, Phrygilus 200, 252
patersonae, Anthreptes 56, 82
paulus, Corvus 698, 722, 753
pauper, Camarhynchus 770
pauper, Sporophila 208, 258
pealii, Erythrura 508
peasei, Estrilda 502
pectoralis, Aimophila 199, 251
pectorale, Dicaeum 47
pectoralis, Cissomela 116, 119, 123, 141, 161
pectoralis, Cyrtostomus 87
pectoralis, Euphonia 296, 316
pectoralis, Hylophilus 359, 362, 367
pectoralis, Icterus 214
pectoralis, Lonchura 487, 515
pectoralis, Nectarinia 63, 65, 86
pectoralis, Plocepasser 530, 559
pectoralis, Poospiza 203, 254
pectoralis, Thlypopsis 771
pectoralis, Uroloncha 5/2
pectoralis, Zosterops 99, 105
peeti, Saltator 273
peguensis, Ploceus 582
peguensis, Zosterops 104
pekinensis, Parus 18
pekingensis, Garrulus 697, 738
pelewensis, Erythrura 487, 508
pelonota, Ammodramus 195, 245
pelzelni, Aplonis 775
pelzelni, Granatellus 773
pelzelni, Ploceus 519, 538, 573
pelzelni, Sicalis 201, 204, 255, 534, 592
pembae, Nectarinia 72, 93
pendulinus, Remiz 5, 11, 12
Peneothello cyanus 682
penicillata, Eucometis 280, 281, 285, 307
846
penicillata, Meliphaga 115, 118, 119 (als per-
spicillata), 126, 127, 158
peninsulae, Ammodramus 195, 245
peninsulae, Cardinalis 273
pensilis, Ploceus 581
pensylvanica, Dendroica 322, 325, 341, 356,
404
Pentheres 6, 19
Penthestes 6
Penthetria 518, 590
— macroura 527
Penthetriopsis 518, 554, 989
percussus, Prionochilus 42, 43, 45
peregrinus, Vermivora 322, 323, 338
perennia, Cisticola 555
Periparus 6, 17
Periporphyrus erythromelas 771
Perisoreus 695, 696, 705, 709, 714, 716
— canadensis canadensis 709, 739
— — capitalis 709, 739
— — fumifrons 739
— — griseus 709, 739
— — nigricapillus 709, 739
— — obscurus 696, 709, 739
— — paeificus 709, 739
— infaustus 696, 709, 714, 717
— — infaustus 697, 698, 709, 720*, 739
— — rogosowi 709, 740
— — ruthenus 709, 740
— internigrans 776
Perissospiza 430, 453, 454, 485
perpallidus, Ammodramus 196, 246
perplexa, Zosterops 100, 107
perplexus, Corvus 698, 725, 758
perreini, Estrilda 490, 501
persaturatus, Garrulus 738
persica, Sitta 29
persicus, Cacicus 411
persicus, Parus 23
personata, Diglossa 320
personata, Emberiza 168, 180, 184, 233
personata, Poephila 488, 507
personata, Poospiza 254
personatus,. Artamus 649, 650, 653
personatus, Atlapetes 771
personatus, Coccothraustes 431, 453, 485
perspicillata (statt penicillata), Meliphaga 119
perstriata, Ptiloprora 116, 119, 136, 158
perstriatus, Saltator 275
perthi, Artamus 651, 653
peruana, Myospiza 196
peruanus, Ammodramus 196, 247
peruviana, Brachyspiza 240
peruviana, Sporophila 207, 209, 259
peruviana, Tangara 772
peruvianus, Quiscalus 371, 339, 424, 432*
peruviensis, Volatinia 206, 256
peruviensis, Zonotrichia 188, 191, 241
petechia, Dendroica 212, 322, 325, 326, 327,
340, 341, 352*, 402 — 404
petersii, Agelaius 400*, 417
petiti, Euplectes 587
Petronia 517 —520, 522, 532, 533
— brachydactyla 519, 520, 535, 568
— dentata 536, 570
— flavicollis 568
— petronia 535
— — barbara 536, 569
— — brevirostris 523, 536, 569
— — idae 569
— — intermedia 536, 569
— — maderensis 535, 569
— — petronia 523, 535, 536, 569
— — puteicola 536 (als puteiela), 569
— — tibetana 536, 569
— superciliaris 535, 536, 569
— xanthocollis 520
— — massaica 568
— — pyrgita 535, 568
— — reichenowi 568
— — transfuga 496*, 535, 568
— — xanthocollis 523, 535, 568
— xanthosterna 568
petronia, Petronia 523, 535, 536, 569
petulans, Pipilo 214, 265
Peucaea 250
Peucedramus 321
— taeniatus arizonae 335, 350
Pezites 385, 386
— militaris 370, 371, 394, 399
— — albipes 420
— — bellicosa 384, 420
— — defilippii 384, 420
— — falklandicus 385, 400*, 420
— — militaris 384, 420
Pezopetes 166
— capitalis 218, 268
Phacellodomus 392, 398
— rufifrons 392, 399
Phaenicophilus 278— 280
— palmarum 284, 306
— poliocephalus 280, 281
— — coryi 285, 306, 766
— — poliocephalus 284, 306, 766
phaeochromus, Oriolus 775
phaeonotus, Junco 166 (als phaeonota), 192,
193, 194, 243
phaeonotus, Parus 18
phaeosoma, Melamprosops 773
Phaeothlypis 335
— fulvicauda leucopygia 335, 350
— — semicervina 335, 350
— rivularis mesoleuca 335, 350
— — rivularis 335, 350
phaethotoptila, Lonchura 511
phaeton, Neochmia 487, 490, 506
Phainopepla nitens 401
pharetra, Dendroica 326, 341
Phasianidae 168, 664, 693
Pheucticus 165, 166
— aureoventris 167
— — aureoventris 220, 270
— chrysopeplus 166, 394
— — chrysogaster 167, 220, 270
— — chrysopeplus 220, 270
— — tibialis 220, 270
— ludovicianus 167, 220, 270
— melanocephalus 220, 454
— — maculatus 271
— — melanocephalus 270, 272*
philadelphia, Geothlypis 322, 332, 346
philadelphieus, Vireo 359, 366
Philemon 113—115, 118, 134
— albitorques 770
— argenticeps 116
— — alexis 135, 157
— — argenticeps 119, 135, 157
— — kempi 135, 157, 160*
— brassi 769
— buceroides 118
— — gordoni 133
— — neglectus 133, 156
— ceineta 156
— ceitreogularis 116
— — carpentariae 133, 156
— — ceitreogularis 132, 133, 156, 160*
— — johnstoni 133, 156
— — sordidus 132, 133, 156
— cockerelli (auch sub novaeguineae, 119)
116, 118, 133, 134, 157, 681, 704
— — cockerelli 135
— ceornieulatus 116, 133, 134
— — elamans 136, 157
— — corniculatus 119, 136, 157
— — ellioti 136, 157
— diemenensis 770
— eichhorni 770
— fuscieapillus 770
— gigolensis 770
— inornatus 769
— meyeri 116, 119, 132, 156
— moluecensis 770
— novaeguineae 113, 116, 156
— — aruensis 133, 756
— — cockerelli (meist als Art geführt) 119
— — confusus 134, 157
— — fretensis 119, 134, 157
— — jobiensis 119, 134, 157
— — novaeguineae 116, 133, 156
— — subtuberosus 134, 135, 157
— — yorki 134, 157
— subcorniculatus 770
Philemonopsis 132, 156
Philesturnus 591, 645
847
Philetairus 520, 521
— socius lepidus 496*, 531, 560
— — socius 523, 531, 560
philippensis, Sturnus 592 (als philippinus), 600,
615
philippinus, Corvus 698, 724, 757
philippinus, Ploceus 519, 523, 548, 582
phillipsi, Parus 17
philomelos, Turdus 203, 222, 279, 280, 289,
383, 387, 388, 395, 449, 555, 593, 598, 701
Philydor rufus 282
Phlogothraupis 210, 278, 288
phoebe, Sayornis 403, 404
phoeniceus, Agelaius 289, 371, 382, 383, 400*,
417, 418, 453, 454
phoeniceus, Cardinalis 220 u. 221 (als phoeni-
cea), 271
phoeniceus, Euplectes 554, 588
phoenicius, Tachyphonus 280, 281, 287, 308
phoenicoptera, Pytilia £93
phoenicopterus, Lamprotornis 594, 596, 597,
611
Phoenicothraupis 278, 287, 288, 308, 309
phoenicotis, Anthreptes 50, 55, 63, 80
phoenicotis, Chlorochrysa 772
Phoenicurus 99
— moussieri 99
— ochruros 196, 219
— phoenicurus 5, 99, 220, 222, 449, 541, 547,
551, 667
phoenicurus, Amaurornis 667
phoenicurus, Phoenicurus 5, 99, 220, 222, 449,
541, 547, 551, 667
Pholidornis 487, 488
— rushiae rushiae 516
Phonipara 211
Phonygama 673
Phonygammus 673, 675—678, 682, 684, 688
— keraudrenii 691
— — gouldi 682, 691
— — jamesi 672*, 677, 680, 681, 689, 691
— — neumanni 682, 691
— — purpureoviolaceus 682, 687, 691
Phormoplectes 583
Phragamaticola aedon 679
phrygia, Xanthomyza 116, 140, 160*, 161
Phrygilus 166, 167, 200, 201, 252, 398, 521
— alaudinus alaudinus 201, 252
— — bipartitus 201, 252
— — humboldti 201, 252
— atriceps 200
— — atriceps 200, 251
— carbonarius 770
— dorsalis 770
— erythronotus 770
— fruticeti fruticeti 200, 252
— gayi 191, 200, 201
— — carnipes 200, 251
848
Phrygilus gayi minor 200, 251
— patagonicus 200, 252
— plebejus 200
— — plebejus 168, 201, 252
— rusticus 252
— unicolor 200, 394
— — geospizopsis 201, 252
— — inca 201, 252
— — tucumanus 201, 252
— — unicolor 200, 201, 252
Phylidonyris 113, 116, 139
— albifrons 138, 159
— melanops 115, 116, 138
— — braba Mathews (errore braha) 138 (Kan-
garoo Insel, jetzt nicht mehr anerkannt)
— — crassirostris 138, 159
— — melanops 138, 159
— nigra gouldii 138 (als gouldi), 159
— — nigra 138, 158
— notabilis 770
— novaehollandiae 131
— — campbelli 158
— — canescens 137, 158
— — longirostris 137, 158, 160*
— — novaehollandiae 119 (errore Ph. v. n.),
137, 158
— pyrrhoptera 131, 137
— — halmaturina 137, 158
— — indistincta 137, 158
— — inornata 137, 158
— — pyrrhoptera 111, 137, 158
— undulata 770
Phyllastrephus madagascariensis 132
Phyllomanes 366
Phylloscopus 36, 51, 56, 294, 324, 333
— affınis 323
— bonelli 177 .
— collybita 76, 408
— sibilatrix 206, 208, 521, 550
— trochilus 206
Physocorax 695, 721
Piapia 719
Pica 695, 699, 701, 703—707, 709—714, 716,
717, 723, 724
— caudata 745
— nuttalli 696, 698, 715, 746
— pica 529, 696, 697, 717, 724
— — anderssoni 715, 746
— — bactriana 698, 715, 745
— — bottanensis 715, 745
— — fennorum 698, 714/5, 744
— — galliae 715, 745
— — hemileucoptera 715, 746
— — hudsonia 698, 715, 746
— — jankowskii 715, 746
— — leucoptera 698, 745
— — mauritanica 697, 715, 720*, 745
— — melanotos 715, 745
Pica pica pica 698, 714, 715, 745
— — sericea 715, 746
pica, Fluvicola 396
pica, Pica 529, 696—698, 714, 715, 717, 720*,
724, 744—746
picata, Grallina 648
picatus, Cracticus 656, 659
Picidae 25, 387
picta, Conopophila 116, 117, 123, 140, 161
picta, Emblema 490, 505 -
pictus, Calcarius 187, 235
pictus, Myioborus 334, 348
picumnus, Climacteris 33*, 37, 41
Pieper 51, 279
Piezorhina cinerea 770
pileata, Brachyspiza 240
pileata, Nemosia 281, 282, 284, 306
pileata, Neositta 34
pileata, Pyrrhula 452, 483
pileata, Sporophila 259
pileatus, Atlapetes 217, 267, 268
pileatus, Chlorospingus 771
pileolata, Wilsonia 333, 347
pileatus, Coryphospingus 219, 269
pinaiae, Lophozosterops 769
Pinaroloxias inornata 770
Pinicola 430, 431, 451
— enucleator alascensis 450, 480
— — californicus 450, 480
— — canadensis 480
— — enucleator 433, 450, 180, 492* -
— — eschatosus 450, 480
— — kamtschatkensis 450, 480
— — leucurus 450, 480
— — montanus 450, 480
— — pacatus 450, 480
— — sakhalinensis 450, 480
— subhimachalus 774
pinosus, Junco 192, 242, 243
pinus, Carduelis 431, 433, 441, 443, 465
pinus, Dendroica 322, 326, 341
pinus, Vermivora 322, 323, 338
pipilans, Acanthis 445, 470
Pipilo 165— 167, 213, 215, 403
— aberti 214, 215
— — aberti 213, 215, 265
— — vorhiesi 215, 265
— albicollis 215, 265, 401
— chlorurus 213, 263
— erythrophthalmus 166, 213, 215, 223, 403,
404
— — alleni 263
— — arcticus 214, 264
— — canaster 263
— — clementae 264
— — curtatus 264
— — erythrophthalmus 167, 213, 263
— — falcifer 264
nn
Pipilo erythrophthalmus falcinellus 264
— — maecronyx 213, 214, 263 (einmal als
erythrophthalamus), 264
— — maculatus 214, 264
— — megalonyx 214, 264
— — montanus 214, 264
— — oregonus 264
— — rileyi 263
— fuscus 213, 215, 432
— — albigula 214, 265
— — crissalis 167, 214, 265
— — fuscus 214, 215, 265
— — mesoleucus 214, 215, 265
— — petulans 214, 265
— — seniculus 214, 265
— — toroi 215, 265, 272*, 428, 432
— ocai 214, 263
— — brunnescens 213, 263
socorroensis 770
Binra 282
Pipraeidea 278
— melanonota 772
Pipridae 282
Piprisoma 42, 43, 45
— squalidum 43, 45
Piprites chloris 675
Pipromorpha oleaginea 296
Piranga 278, 230— 282, 288, 398, 450
— bidentata citrea 309
— — sanguinolenta 309
— flava 401
— — faceta 309
— — flava 309
— — hepatica 288, 309
— — Jutea 309
— — saira 309
— — testacea 309
— leucoptera leucoptera 282,
— — venezuelae 282, 310
— Judoviciana 281, 288, 310
— olivacea 280, 281, 288, 310
— roseogularis 772
— rubra cooperi 288, 309
— — rubra 281, 288, 309
— rubriceps 772
Pirole 3, 218, 221, 359, 385, 542, 608*, 623,
631, 647, 678
Pitangus 398
— sulphuratus 392, 398, 702
pitiayumi, Parula 322, 324, 339, 340, 352*
Pitohui 680
— ferrugineus clarus 679, 680
— — leucorhynchus- 680
Pitpits 278, 304*
Pitta 128, 679
Pitylus 167, 221, 278
— grossus fuliginosus 166, 221, 273
pityophila, Dendroica 322, 326, 342
288, 304*, 310
54 Oologie, 40. Lieferung
849
Plagiospiza 165, 200, 251
plateni, Nectarinia 65, 87
plateni, Prionochilus 768
platensis, Embernagra 205, 221, 256, 272*
platurus, Anthreptes 51, 52, 56, 82, 96*
platurus, Dicrurus 632, 633, 637, 644
Platyeichla flavipes 684
Platylophus 695 — 697
— galericulatus galericulatus 699, 729
Platysmurus 696
— leucopterus aterrimus 697, 700, 729
— — leucopterus 700, 729
Platyspiza 165, 213
plebejus, Phrygilus 188, 200, 201, 252
Plectorhyncha 115
— lanceolata 116, 119 (als Plectorhynchus
lanceolatus), 139, 159, 160*
Plectrophenax 166, 187
— nivalıs 186, 187
— — hyperboreus 188, 236
— — insulae 188, 236
— — nivalis 167, 187, 188, 235
— — townsendi 188, 236
— — vlasowae 188, 235
Plesiositagra 518, 576, 578
pleurostictus, Thryothorus 401
Ploceela chrysaea 581
Ploceella 518, 547, 581
— hypoxantha 521
Ploceidae 114, 430, 434, 445, 487, 517, 521, 524,
529, 556, 774
Ploceiden 99, 445, 488, 490, 518, 519, 521,
522, 529, 530, 547, 548, 556
Ploceinae 517, 518, 522
Plocepasser 517, 518, 520—522
— donaldsoni 530, 560
— mahali 517, 519, 529, 530
— — ansorgei 559
— — mahali 523, 530, 560
— — melanorhynchus 496*, 530, 559
— — pectoralis 530, 559
— — stentor 523, 530, 560
— rufoscapulatus 774
— superciliosus 517, 530, 560
Ploceus 518, 519, 521, 522, 547
— albinucha 775
— alienus 521, 540, 574
— amaurocephalus 582
— angolensis 520, 549, 583, 775
— aurantius 520, 521
— — aurantius 541, 575
— — rex 541, 575
— aureoflavus pallidus (statt subaureus aureo-
flavus) 523
— aureonucha 775
— badius 520, 521
— — badius 546, 580
— baglafecht 517, 519—521
850
Ploceus baglafecht baglafecht 523, 537, 572
— — emini 520, 537, 538, 572, 573
— — nigrotemporalis 572
— — nyikae 538, 572
— — reichenowi 520, 523, 537, 572
— — sharpii 572
— — stuhlmanni 523, 538, 572
— bannermani 774
— batesi 774
— baya 582
— benghalensis 519, 523, 548, 581
— bertrandi 520, 538, 573
— bicolor 519—521
— — bicolor 548, 583
— — kersteni 548, 583
— — stietifrons 538, 548, 583
— — tephronotus 548, 582
— bojeri 518—521, 541, 551, 576
— ceamburni 575
— capensis 519, 522, 545
— — capensis 540, 574, 575
— — olivaceus 540, 574
— castaneiceps 519, 520, 523, 540, 541, 576
— castanops 519—521, 542, 577
— crocatus 574
— cucullatus 519—522, 539, 540, 545, 546
— — abyssinicus 538, 545, 579
— — bohndorffi 523, 5344, 579
— — collaris 523, 544, 579, 767
— — cucullatus 523, 543, 544, 545, 578
— — femininus 579
— — graueri 497*, 545, 579
— — modestus 578
— — nigriceps 519, 523, 527, 545, 579
— — spilonotus 520, 545, 579
— — textor 578
— dichrocephalus 775
— dorsomaculatus 775
— flavipes 775
— golandi 775
— galbula 519—521, 542, 577
— grandis 519, 545, 579
— gregalis 583
— heuglini 519, 520, 541, 576
— — neglectus 576
— hypoxanthus 520—522
— — hymenaicus 547 (als hymenoicus), 581
— — hypoxanthus 547, 581
— insignis 520, 549
— — insignis 549, 583
— intermedius 519
— — cabanisii 523, 542, 577
— — intermedius 542, 577
— jacksoni 520, 521, 543, 546, 580
— jamesoni 575
— javanensis 581
— luteolus 519
— — kavirondensis 538, 573
Ploceus luteolus luteolus 523, 538, 573
— manyar 519, 548
— — flaviceps 581
— — manyar 582
— — peguensis 582
— — striatus 581
— — williamsoni 582
— megarhynchus 519, 523, 548, 582
— melanocephalus 519—521, 545
— — capitalis 519, 546, 580
— — dimidiatus 519, 549, 580
— — duboisi 546, 580
— — fischeri 546, 580
— — melanocephalus 545, 580
— — usumburae 546, 580
— melanogaster 520
— — stephanophorus 540, 574
— nelicourvi 519, 523, 547, 581
— nigerrimus 519, 546
— — castaneofuscus 545, 579
— — nigerrimus 497*, 523, 545, 579
— nigricollis 519— 521, 546
— — brachypterus 523, 539, 574
— — grayi 539, 574
— — melanoxanthus 539, 574
— — nigricollis 523, 539, 574
— nigrimentum 775
— ocularis 520, 521
— — crocatus 523, 538, 539, 573, 574
— — ocularis 539, 574
— — suahelicus 539, 574
— olivaceiceps 520, 549, 775
— — olivaceiceps 549
— pelzelni 519
— — monachus 538, 540, 573
— — pelzelni 538, 573
— pensilis 581
— philippinus 519, 548
— — angelorum 552
— — atrigula 548, 582
— — burmanicus 523, 582
— — infortunatus 582
— — philippinus 523, 548, 582
— — travancorensis 582
— preussi 775
— princeps 519, 541, 576
— rubiginosus 519
— — rubiginosus 546, 580
— sakalava 519, 522, 547
— — minor 581
— sanctithomae 519, 549, 583
— spekei 519, 520, 548, 578
— spekeoides 775
— st. thomae 583 (s. sanctithomae)
— subaureus 519—521
— — aureoflavus 523 (errore aureoflavus palli-
dus), 540,575
— — subaureus 540, 575
Ploceus subaureus tongensis 540, 575
— subpersonatus 775
— superciliosus 519, 520, 548, 581
— taeniopterus 520, 521
— — taeniopterus 542, 577
— tricolor 519
— — interscapularis 547, 580
— velatus 5319—521, 526, 528, 540, 543, 545,
548
— — arundinaceus 578
— — auricapillus 578 ü
— — nigrifrons 523, 543, 578
— — reichardi 548, 578
— — shelleyi 578
— — tahatali 578
— — uluensis 542, 577, 578
— — velatus 523, 538, 542, 548, 578
— — vitellinus 538, 542, 543, 545, 577
— weynsi 775
— xanthops 519—521, 523, 540, 575, 603
— xanthopterus 519—521, 542, 543, 551
— — castaneigula 576
— — marleyi 541, 576
— — xanthopterus 497*, 541, 576
— spec. 516
plumbea, Dendroica 326, 341
plumbea, Diglossa 282, 302, 320
plumbea, Euphonia 172
plumbea, Ptiloprora 770
plumbea, Porzana 283
plumbea, Sporophila 207, 208, 257
plumbea, Strepera 658, 661
plumbeus, Psaltriparus 19
plumbeus, Vireo 361, 365
plumbiceps, Saltator 274
plumula, Meliphaga 125, 152
Podoces 695, 716, 747
— biddulphi 697, 716, 747
— hendersoni 697, 698, 716, 747
— panderi 709, 716, 747
— pleskei 697, 716, 747
Poecile 6, 13, 14, 16
Poecilia 6, 15
Poeciloides 6, 16
Poecilothraupis 293, 314
— igniventris (jetzt zu Anisognathus) 280
poensis, Lonchura 490, 510
Poeoptera kenricki 775
— lugubris 592—594, 595, 609
— stuhlmanni 775
Poephila 487, 508
— acuticauda 487, 488, 490, 507
— bichenovii 488
— — annulosa 487, 506
— — bichenovii 490, 506
— cincta 488
— — atropygialis 490, 507
— — ceincta 507
54*
851
Poephila cincta nigrotecta 507
— guttata 483
— — castanotis 487, 490, 506
— hecki 507
— personata 488
— — leucotis 507
— — personata 507
Poephilae 487
Poephilinae 517
poicilotis, Hylophilus 367
polaris, Emberiza 185, 233
poliocephala, Geothlypis 332, 346
poliocephalus, Phaenicophilus 281, 284, 285,
306, 766
poliogaster, Caryothraustes 166, 221, 273
poliogastra, Estrilda 501
poliogastra, Zosterops 110
poliogenys, Spermophaga 774
poliogyna, Loxia 481
polionota, Lagonostieta 499
polionotus, Arremon 216, 266
poliopleura, Emberiza 182, 231
poliopterus, Toxorhamphus 115, 116, 119, 126,
147
Polioptila 3, 5
— caerulea 404
— melanura 401
Poliospiza 359, 430, 437—441, 458, 459, 461,
462
poltaratskyi, Sturnus 600, 617
polygramma, Meliphaga 769
polyzona, Ortygospiza 505
Pomatorhinus 667
Pomatostomus 132, 144, 146
ponapensis, Aplonis 594, 606
ponapensis, Zosterops 99, 109
pontilis, Junco 192, 242
Pooecetes 166, 194, 403
— gramineus 196, 198
— — affinis 249
— — confinis 248
— — gramineus 168, 248
Poospiza 165, 166, 359, 398, 449, 521
— alticola 770
— baeri 770
— boliviana 770
— caesar 770
— cinerea cinerea 203, 255
— — melanoleuca 202, 2083, 254, 272*
— erythrophrys erythrophrys 202, 253
— garleppi 770
— hispaniolensis 203, 254
— hypochondria 770
— Jlateralis 197, 280, 281, 283
— — cabanisi 203, 254, 272*
— — Jateralis 203, 254
— nigrorufa 165
— — nigrorufa 167, 203, 254
852
Poospiza nigrorufa whitii 203, 254
— ornata 770
— personata 254
— rubecula 770
— thoracica 202, 253
— torquata pectoralis 203, 254
— — torquata 203, 254
Porphyrio 666, 681
Porphyriops 655
— melanops 686
porphyrocephala, Iridosornis 772
porphyronotus, Sturnus 600, 617
porphyropterus, Lamprotornis 612
portoricensis, Coereba 322, 337, 353
portoricensis, Icterus 370, 378, 381, 416
portoricensis, Loxigilla 770
portoricensis, Spindalis 281, 289, 312
Porzana parva 283, 685
— pusilla 283
— tabuensis plumbea 283
Prachtfinken 487, 489, 496*, 517, 521, 524, 526
Prachthäher 708
Prachtparadiesvogel 683
praetermissa, Euphonia 279, 295, 316
prasina, Erythrura 490, 507
pratensis, Ammodramus 196, 246
pratensis, Anthus 56, 68, 298, 533, 534, 547
praticola, Sturnella 371, 421
preciosa, Tangara 296, 298, 318, 771
pretrei, Chlorophonia 316
pretrei, Spindalis 280, 289, 311
preussi, Nectarinia 51, 52, 69, 90
preussi, Ploceus 775
prillwitzi, Arachnothera 51, 78, 97
primigenius, Aethopyga 768
princeps, Ammodramus 194, 243
princeps, Melidectes 770
princeps, Ploceus 519, 541, 576
princetoniana, Melanodera 201, 252
principalis, Corvus 726, 727, 760
principalis, Vidua 558
Prinia 556
— familiaris 302
— flavicans 526, 556
Prionochilus 42, 45
— ma culatus 768
— olivaceus 768
— percussus ignicapilla 48, 45
— — percussus 48, 45
— plateni 768
— thoracicus 768
xanthopygius 48, 45
Pina 663, 666
— newtoniana 665, 670
Prionopidae 646, 699
Procarduelis 447, 475
procerior, Foulehaio 115, 129, 154
Procnias 278, 302
Procniae nudicollis 375
— tersa 320
Procniatidae 278
Progne 303, 398
— chalybea domestica 303
— concolor 303
— modesta modesta 303
— tapera 398
progne, Diatropura 590
progne, Euplectes 520, 521, 523, 535, 553, 555,
590
Promeropidae 113, 146
Promeropinae 113, 146
Promerops 113, 116, 146
— cafer 146, 160*, 164
— gurneyi gurneyi 146, 164
Propasser 430, 449, 477 —479
propeparva, Carduelis 468
propinqua, Geospiza 263, 766
propinqua, Lonchura 511
proprium, Dicaeum 768
proselia, Nectarinia 64, 86
prosopidicola, Quiscula 388, 424
Prosthemadera 113, 118, 645
— novaeseelandiae 115, 116
— — novaeseelandiae 145, 160*, 164
prosthemelas, Camarhynchus 263
prosthemelas, Icterus 371 (als p. prosth.), 379,
381, 15
protegatus, Corvus 719, 751
Protonaria 321, 336, 766
— citrea 322, 330, 345, 352*, 403
providentialis, Psaltriparus (einmal als provi-
dentalis) 71
provocator, Foulehaio 116, 124, 129, 154
Prunella 449
— fulvescens nanshanica 449
— modularis 5, 449, 542, 543, 598
Psaltria 4, 5
— exilis 10
psaltria, Carduelis 402, 430, 434, 441, 444, 467
Psaltriparus 4
— melanotis (auch sub minimus) lloydi 71
— — melanotis 11
— minimus /1, 401
— — californicus 10
— — grindae 10
— — melanotis 11
— — melanurus 7/0
— — minimus 10
— — plumbeus 11
— — providentialis (auch providentalis) 171
— — sociabilis 70
Psarisomus 114
— dalhousiae 631
Psarocolius 369, 374, 398, 878, 879
— angustifrons 370
— — alfredi 374, 377, 405, 407, 410
853
Psarocolius angustifrons australis 374 Psittospiza 283, 305
— — oleaginus 371, 374, 400*, 410 Psomocolax 404, 429
— salmoni 370, 373, 405, 210 Pteridophora alberti 776
— atrovirens 370, 373, 375, 408, 210 Pteropodocys maxima 665
— bifasciatus 774 ptilogenys, Gracula 592, 602, 621
— cassini 774 Ptilonorhynchidae 668, 673— 677, 679, 776
— decumanus 369, 372, 373, 375, 376, 382, Ptilonorhynchus 663, 675, 681
404—409 — violaceus minor 667, 670
— — decumanus 370, 371, 372, 400*, 408, 410, _-— — violaceus 663, 664, 666, 670
432 Ptiloprora erythropleura 770
— — insularis 370, 371, 372, 400*, 408, 210 — guisei 115
— — maculosus 370, 372, 408, 410 — — guisei 119, 136, 157
— — melanterus 370, 372 — meekiana 770
— guatimozinus 370, 371, 375, 405, 406, Z/I, —- perstriata 116
774 — — lorentzi 158
— haemorrhous (errore als Cacicus h.) 405 — — perstriata 119, 136, 158
— latirostris 773 — plumbea 770
— montezuma 369, 370, 371 (sub Gymnomy- Ptiloris 673, 676, 678, 683, 684, 686
stax), 374, 404, 405 — 409, 411 — magnificus 676
— oseryi 773 — — alberti 683, 692
— viridis 370, 371, 373, 405, 407, 410 — — intercedens 677, 683, 687, 692
— wagleri 407 — paradiseus 676, 677, 683, 691
— — ridgwayi 371, 374, 404, 405, 408, 411 — victoriae 683, 691
— — wagleri 371, 374, 409, 411 Ptilorrhoa castanonota pulchra 684
— yuracares 370, 371, 373, 375 — leucostieta loriae 684, 686, 704
— yuracares 375, 411 Ptilostomus afer 696, 718, 750
eoglosen 591, 614 Ptilotis 121, 123—129, 140, 147, 151 — 154
Pselliophorus 166 — auricomis 153
— luteoviridis 771 — chrysotis 150
— tibialis 218, 268 — cinerea 156
pseudobarbatus, Serinus 460 — diops 154
Pseudochloris 165, 203, 204, 255 — flavigula 153
— aureiventris 204 — sonora 151
Pseudocolopteryx 398 Ptiloxena 388, 423
Pseudoleistes 369— 371, 384, 386, 387, 392, 398 pugetensis, Zonotrichia 241
— guirahuro 386, als guirahiro: 421, 432* pulchella, Myzomela 769
— virescens 386, 392, 398, 422 pulchella, Nectarinia 51, 52, 69, 73, 93, 96*
Pseudonestor xanthophrys 773 pulchellus, Vireolanius 773
Pseudonigrita 520, 531 pulcher, Spreo 592, 598, 613, 614
arnaudi 516, 519, 520 pulcherrima, Aethopyga 52, 75, 95
— — arnaudi 531, 560 pulcherrima, Myzomela 122, 148, 160*
— — dorsalis 531, 560 pulcherrima, Tangara 772
— cabanisi 520, 531, 560 pulcherrimus, Carpodacus 433, 448, 477, 478
Pseudopodoces 445, 536, 695— 697, 717 pulchra, Cyanolyca 776
— humilis humilis 716, 747, 748 pulchra, Incaspiza 770
— — saxicola 716, 720*, 748 pulchra, Macgregoria 673, 678, 690
Pseudoseisura cristata 391 pulchra, Ptilorrhoa 684
— lophotes 392 pumilo, Cyanolyca 776
Pseudozosterops 109 punctata, Tangara 772
Psilorhinus 695, 696 punctatus, Pardalotus 8 (als punctatos)
— morio cyanogenys 707, 734 punctifrons, Anthoscopus 768
— — mexicanus 734 punctigula, Serinus 438, 459
— — morio 707, 734 punctulata, Lonchura 487, 490, 511, 512
— — palliatus 707, 734 punctulatus, Chlorospingus 771
— — vociferus 707, 734 punicea, Amandava 488, 504
psittacea, Erythrura 528 puniceus, Carpodacus 280
psittacula, Camarhynchus 770 pupureus (recte purpureus), Lamprotornis 591
Psittirostra 356, 358 pura, Coracina 599
854
purpurascens, Molothrus 427
purpurascens, Sturnus 600, 608* (als purpuras-
cons), 617
purpurascens, Vidua 523, 525, 557
Purpurblaurabe 704
purpureiceps, Aplonis 595, 609
purpureiceps, Lamprotornis 596, 610
purpureiventris, Nectarinia 51, 71, 92
purpureoviolaceus, Phonygammus 682, 687,
691
purpureus, Carpodacus 431, 433, 441, 447, 448,
476
purpureus, Lamprotornis 591 (als pupureus),
594, 596, 610, 611
purpuropterus, Lamprotornis 597, 612
pusilla, Emberiza 166—168, 179, 230
pusilla, Parula 339
pusilla, Porzana 283
pusilla, Sitta 26, 27, 30
pusilla, Spizella 168, 197, 199, 248, 404
pusilla, Tiaris 260
pusilla, Wilsonia 322, 333, 347, 352*
pusillula, Sporophila 238
pusillus, Corvus 698, 721, 752
pusillus, Euplectes 587
pusillus, Lophospingus 202, 253
pusillus, Serinus 431, 433, 436, 456, 767
pusillus, Vireo 360, 364
pustulata, Spermophaga 488, 490, 495
pustulatus, Icterus 379, 380, 401, 414
puteicola, Petronia 536 (auch als puteieola),
569 ı
Pyenonotiden 182, 453
Pyenonotus 128, 132, 188, 541
Pyenopygius einereus 116
— — marmoratus 119, 132, 156
— ixoides 769
— stietocephalus 769
pygmaea, Sitta 26, 27, 30
pygmaeum, Dicaeum 768
pygmaeum, Oedistoma 115, 120, 147
pylzowi, Urocynchramus 774
Pyranga 278, 309, 310
— aestiva 309
— bidentata 309
— rubra 310
— testacea 309
Pyrenestes 488
— minor 495
— ostrinus frommi 488, 494
— — maximus 494
— — ostrinus 490, 494
— — rothschildi 488, 494
— sanguineus coccineus 494
Pyrgisoma 215
— xantusi 265
pyrgita, Petronia 535, 568
Pyrocephalus rubinus 401
pyrohypogaster, Hypopyrrhus 387, 422
Pyromelana 518, 519, 552, 553, 585 —587
— flammiceps 586
Pyrrhocheira 591, 595
Pyrrhochira 591, 595
— caffra 609
Pyrrhocoma 279, 299
— ruficeps 284, 306
Pyrrhocorax 645, 646, 695— 699, 705, 707, 709,
714; 716
— alpinus 750
— graculus 697, 707
— — digitatus 698, 718, 750
— — forsythi 750
— — graculus 718, 750
— pyrrhocorax baileyi 718, 749
— — barbarus 718, 749
— — brachypus 698, 718, 750
— — centralis 698, 718, 749
— — docilis 696, 697, 718, 749
— — erythrorhamphus 717, 718, 749
— — himalayanus 696, 698, 718, 749
— — pyrrhocorax 717, 720*, 749
pyrrhocorax, Pyrrhocorax 696— 698, 717, 718,
749, 750
pyrrhonotus, Passer 496*, 532, 563
pyrrhophrys, Chlorophonia 316
Pyrrhoplectes epauletta 774
pyrrhoptera, Phylidonyris 119, 131, 137, 158
pyrrhopterus, Icterus 379, 413
pyrrhopterus, Lycocorax 667, 678, 679, 690
Pyrrhospiza 450, 480
Pyrrhula 203, 383, 430, 434, 435, 440, 449, 450,
521
— aurantiaca 431, 433, 451, 482
— erythaca 431, 452
— — erythaca 433, 452, 483
— erythrocephala 431, 433, 451, 452, 482
— leucogenys 774
— nipalensis 431
— — nipalensis 433, 451, 182
— pyrrhula 130, 175, 431, 434, 435, 448, 450,
452
— — coccinea 452, 483
— — europoea 452, 483
— — germanica 485
— — griseiventris 452, 483
— — minor 483
— — murina 452, 183
— — pileata 452, 483
— — pyrrhula 433, 452, 483, 492*
pyrrhula, Pyrrhula 130, 175, 431, 433, 434, 435,
448, 450, 452, 183, 492*
Pyrrhulagra 165, 212, 262
pyrrhulina, Emberiza 168, 224*, 234
pyrrhuloides, Emberiza 168, 234
Pyrrhulophonia 294, 314
Pyrrhulorhyncha 165, 234
Pyrrhulorhyncha palustris 234
Pyrrhuloxia 165, 220, 221, 271, 273
pyrrophanes, Cacomantis 117
Pytelia 487
Pytilia 487 —489
— afra 490, 493, 525, 528, 529
— hypogrammica 493, 529
— melba 487, 591, 528, 529, 558
— — belli 487, 493
— — citerior 487, 493
— — grotei 293
— — hygrophila 493
— — melba 490, 493
— — soudanensis 493
— — thamnophila 493
— phoenicoptera phoenicoptera 493
pytyopsittacus, Loxia 433, 451, 481, 492*
quadragintus, Pardalotus £8
quadricolor, Dicaeum 768
quadricolor, Trichothraupis 308
quartinia, Estrilda 501
queenslandica, Conopophila 119 (errore Myzo-
mela), 140, 161
queenslandica, Myzomela (recte Conopophila)
119
Quelea 519, 551
— cardinalis 520, 528 °
— — cardinalis 550, 584
— — rhodesiae 350, 584
— erythrops 519, 550, 584
— quelea 519, 520, 541
— — aethiopica 551, 585
— — lathamii 523 (als lathami), 551, 585
— — quelea 550, 551, 584
quelea, Quelea 519, 520, 523, 541, 550, 551, 584,
585 .
querula, Sporophila 191, 241
quinquestriata, Aimophila 765
quinticolor, Lonchura 774
quintoni, Serinus 439, 460
Quiscalus 369, 387, 388, 390, 391, 453
— lugubris 370, 390, 395, 396
— — breweri 426
— — contrusus 425
— — fortirostris £25
— — inflexirostris 425
— — lugubris 426
— — luminosus 425
— major 170, 370
— — major 389, 424
— — torreyi 389, 424
— mexicanus 170, 370, 387, 667
— — assimilis 424
— — graysoni 388, 423
— — mexicanus 371, 424
— — obscurus 371
— — peruvianus 371, 389, 424, 432*
855
Quiscalus mexicanus prosopidicola 388, 424
— nicaraguensis 370, 389, 424
— niger 370, 390
— — brachypterus 371, 425
— — earibaeus 425, 432*
— — crassirostris 425
— — gundlachii 25
— — niger 425
— palustris 370, 389, 423, 424
— quiscula 187, 370, 371, 390, 391, 406
— — aeneus 424
— — aglaeus 425
— — quiscula 390, 424, 425
— — stonei 389, 424
— — versicolor 371, 389, 124
quiscula, Quiscalus 187, 370, 371, 389, 390,391,
406, 424, 425
quoyi, Cracticus 654, 660
Raben 200, 724, 727
Rabenkrähe 723
Rabenverwandte 3
Rabenvögel 645, 678, 695, 720*, 725, 736*
racheliae, Malimbus 775
ragazzi, Nectarinia 82
raggiana, Paradisaea 680, 682, 685, 687, 693,
694
raimondi, Sicalis 168, 205, 256
Rallen 384, 386, 655, 679, 680, 686
Rallidae 654, 655, 666, 667, 674, 679, 699
Ralliden 699
rama, Hippolais 37, 54
Ramphocoelus 278
Ramphocelus 278, 280, 281, 283, 286, 288, 292,
398
— bresilius 399
— — dorsalis 311
— carbo 285, 396
— — atrosericeus 311
— — carbo 281, 310
— — magnirostris 289, 304*, 310
— — venezuelensis 281 (als venezuelanus), 3/1
— chrysonotus 311
— dimidiatus 281
— — dimidiatus 310
— — isthmicus 289, 310
— flammigerus flammigerus 3/1
— jacapa 310
— melanogaster 772
— nigrogularis 310
— passerinii 401
— — costaricensis 289, 311
— — passerinii 281, 289, 311
— sanguinolentus sanguinolentus 281, 370
ramsayi, Lonchura 515
ramsayi, Zosterops 101, 108
Ramsayornis 117, 128
— fasciatus 115, 117—119
856
Ramsayronis fasciatus broomei 139, 159
— — fasciatus 139, 159
— modestus 115, 117, 118, 138, 139, 140, 159,
160*
ramsdeni, Cyanerpes 319
rangoonensis, Dicaeum 632, 638, 644
rapinensis, Parus 17
rara, Lagonosticta 498, 526
RBauchschwalbe 177, 542
recondita, Chlamydera 668
Rectes jobiensis 134
rectirostris, Anthreptes 55, 81
redivivum, Toxostoma 701
regia, Erythrura 508
regia, Nectarinia 51, 70, 91
regia, Vidua 489, 523, 526, 558
regionalis, Chlorospingus 283, 306
regius, Cieinnurus 677, 686, 693
regius, Cosmopsarus 592, 593, 598, 599, 614
Regulus 4, 51
— ignicapillus madeirensis 76
regulus, Basileuterus 349
reichardi, Ploceus 548, 578
reichenbachii, Nectarinia 50, 52, 58, 83
reichenovii, Cryptospiza 490, 494
reichenowi, Anthreptes 51, 54, 80
reichenowi, Cinnyris 90
reichenowi, Nectarinia 51, 74, 75, 94, 95, 96*
reichenowi, Petronia 568
reichenowi, Ploceus 520, 523, 537, 572
reichenowi, Serinus 437, 438, 458
reichenowi, Zosterops 110
reidi, Emberiza 229
Beiher 221
reiseri, Emberiza 225
relicta, Amaurospiza 211, 260
religiosa, Gracula 592, 594, 595, 602, 603, 612,
621, 622
remifer, Dicrurus 632, 633, 635, 636, 637, 642
Remiz 3,5
— pendulinus barabensis 71
— — caspius 11
— — consobrinus 12
— — coronatus 5, 11
— — macronyx 5, 12
— — pendulinus 5, 11
— — stoliezkae 5, 12
Remizidae 3, 5, 11, 768
rendalli, Lagonosticta 490, 498, 525
rendovae, Zosterops 769
rennelliana, Zosterops 769
respublica, Diphyllodes 776
restrictus, Parus 15, 32*
reticulata, Meliphaga 769
retrocinetum, Dicaeum 768
rex, Parus 7, 23
rex, Ploceus 541, 575
reyi, Hemispingus 771
reynoldsi, Curaeus 387, 422
Rhabdornis inornata 768
— mysticalis 768
Rhabdornithidae 768
Rhamphocharis crassirostris 768
Rheidae 97, 104
rhemifer, Dierurus 114
rhenanus, Parus 7, 14
Rhinocorax 695
— affınis 761
Rhinocrypta 398
— lanceolata 398
Rhipidura 116
— tricolor 123
rhipidurus, Corvus 726, 727, 761
rhizophorae, Nectarinia 65, 87
rhodesiae, Quelea 550, 584
Rhodinocichla rosea 279
— — eximia 285, 306
rhodochlamys, Carpodacus 433, 449, 479
rhodochrous, Carpodacus 433 (als Carpocadus),
449, 478
rhodocolpus, Carpodacus 477
rhodolaema, Anthreptes 80
rhodopareia, Lagonosticta 487, 499, 525
Rhodopechys 430, 431, 535
— githaginea 181, 442, 446, 447, 451
— — amantum 447, 474
— — crassirostris 447, 474
— — githaginea 474
— — zedlitzi 447, 474
— mongolica 433, 447, 474
— obsoleta 430, 433, 441, 447, 475, 535
— sanguinea 431, 442
— — aliena 446, 474
— — sanguinea 433, 446, 474
rhodopeplus, Carpodacus 449, 478, 774
rhodopsis, Lagonosticta 498, 525
rhodopyga, Estrilda 487, 502, 526
Rhodospingus 166
— cruentus 210, 219, 269
Rhodospiza 430, 447, 475
Rhodothraupis celaeno 771
Rhyacornis fuliginosa 210
Rhynchocyclus 114
Rhynchophanes 165, 186, 235
Rhynchospiza 165, 250
Rhynchostruthus socotranus 774
richardi, Anthus 202
richardsoni, Melanospiza 770
Richmondena 220, 271
richmondi, Agelaius 401
richmondi, Arremonops 167, 267
ridgwayi, Cyanoecitta 701, 730
ridgwayi, Parus 24
ridgwayi, Psarocolius 371, 374, 404, 405, 408,
411
ridgwayi, Vermivora 323, 339
riefferii, Chlorornis 280, 283, 305
Riesenkuhstärling 404, 406 — 408
riggenbachi, Serinus 458
rileyi, Pipilo 263
riparia, Riparia 86
Riparia riparia 86
riparius, Molothrus 388, 396, 423, 427
rivularis, Phaeothlypis 335, 350
rivularis, Zonotrichia 239
robertsi, Anthoscopus 12
robinsoni, Strepera 658, 661
roborowskii, Carpodacus 774
robusta, Arachnothera 52, 78, 98
robustus, Callothrus 228
robustus, Cractes 660
roccatii, Anthoscopus 763
rockefelleri, Nectarinia 768
rodwayi, Euphonia 290, 315
rogosowi, Perisoreus 709, 740
Rohrammer 180, 186
rolleti, Oriolus 625, 629
rosaceus, Aegithalos 9
rosea, Rhodinocichla 279, 285, 306
roseatus, Carpodacus 433, 447, 449, 476
roseipectus, Carpodacus 477
rosenbergii, Myzomela 769
Rosenstar 600
roseogularis, Piranga 772
roseus, Aegithalos 9
roseus, Carpodacus 433, 449, 478
roseus, Sturnus 591, 592, 594, 600, 601, 608*,
616
rositae, Passerina 166, 223, 275
Rostammer 176
rostrata, Acanthis 445, 469
rostrata, Geothlypis 773
rostratus, Passerculus 195, 244
rotensis, Zosterops 105
Rothaubengärtner 665
rothschildi, Astrapia 677, 685. 693
rothschildi, Buthraupis 772
rothschildi, Leucopsar 592, 594, 601, 619
rothschildi, Nucifraga 717, 748
rothschildi, Passerina 168, 222, 276
rothschildi, Pyrenestes 488, 494
rothschildi, Serieulus 670, 672*
Rotkardinal 221
Rotkehlchen 192, 196, 383, 446, 452
Rotparadiesvogel 688
Rotschnabelkitta 710
rourei, Nemosia 771
Rowettia goughensis 765
rubecula, Erithacus 114, 192, 196, 206, 649
rubecula, Poospiza 770
ruber, Ergaticus 334, 347
ruberrima, Lagonosticta 498, 525 — 527
ruberrimus, Carpodacus 448, 477
rubescens, Carpodacus 774
857
rubescens, Coryphospingus 219, 269
rubescens, Nectarinia 51, 52, 59, 84
rubetra, Saxicola 551
rubica, Habia 279-281, 287, 288, 304*, 308
rubicilla, Carpodacus 433, 449, 479
rubicilloides, Carpodacus 431, 447, 449, 450,
479
rubicoides, Habia 281, 287, 308
rubicunda, Carpodacus 433, 449, 478
rubidiventris, Parus 6, 7, 17
rubiensis, Manucodia 680, 687, 690
rubiginosa, Dendroica 325, 340
rubiginosus, Ploceus 519, 546, 580
rubinigentis, Anthreptes 51, 54, 80
rubinus, Pyrocephalus 401
rubra, Foudia 551, 585
rubra, Habia 280, 287, 304*, 308
rubra, Paradisaea 672*, 677, 688, 694
rubra, Piranga 281, 288, 309
rubra, Pyranga 310
rubrata (recte rubratra), Myzomela 149
rubratra, Myzomela 122, 149
rubricapilla, Vermivora 339
rubricapillus, Aegithalos 3, 10
rubricata, Lagonosticta 490, 499, 525, 526
rubricatum, Melozone 215, 266
rubricatus, Pardalotus 28
rubriceps, Malimbus 547, 550,584
rubriceps, Piranga 772
rubriceps, Sycobius 584
rubricollis, Malimbus 519, 520, 549, 583
rubrifrons, Cardellina 333, 347
rubrifrons, Parmoptila 490
rubrirostris, Chlorospingus (jetzt Cnemoscopus),
279
rubrirostris, Cnemoscopus 279 (als Chlorospin-
gus), 284, 306
rubrocoronatum, Dicaeum 47
rubroniger, Lonchura 513
rubropygium, Dicaeum 44, 46
rudolphi, Paradisaea 675, 676, 683, 688. 689,
694
rueppellii, Onychognathus 594, 595, 609
rufa, Climacteris 37, 41
rufa, Dendrocitta 743
rufescens, Aimophila 199, 251, 401
rufescens, Cracticus 660
rufescens, Parus 7/7
rufescens, Sylvietta 25
rufibarba, Estrilda 774
ruficapilla, Dendroica 340
ruficapilla, Hemithraupis 771
ruficapilla (recte ruficapillus), Schistochlamys
280
ruficapilla, Spermophila 487 —490, 495
ruficapilla (jetzt vitriolina), Tangara 280, 878
ruficapilla, Vermivora 322, 323, 339
ruficapillus, Agelaius 175, 383, 419
858
ruficapillus, Schistochlamys 280 (als ruficapilla),
282, 305
ruficauda, Aimophila 199, 250, 401, 765
ruficauda, Histurgops 530, 560
ruficauda, Neochmia 490, 506
ruficeps, Aimophila 199, 250 (als strigiceps),
251
ruficeps, Pyrrhocoma 284, 306
ruficeps, Thlypopsis 771
ruficervix, Tangara 772
ruficollis, Corvus 726, 759
ruficollis, Cypsnagra 305
ruficollis, Loxigilla 212, 262, 272*
ruficollis, Madanga 769
ruficollis, Montifringilla 536, 570
ruficollis, Sporophila 207, 209, 259
ruficollis, Tanagrella 320
ruficollis, Turdus 392
rufidorsalis, Arremon 216, 261
rufidorsalis, Passer 532, 562
rufifrons, Basileuterus 335, 349, 401
rufifrons, Phacellodomus 392, 399
rufigenis, Atlapetes 771
rufigenis, Tangara 772
rufigula, Tangara 772
rufigularis, Conopophils 767
rufina, Sporophila 238
rufinucha, Atlapetes 217, 267
rufipectus, Parus 18
rufitergum, Garrulus 735
rufiventer, Tachyphonus 772
rufiventris, Euphonia 293, 296, 316
rufiventris, Parus 6, 7, 20
rufiventris, Saltator 275
rufiventris, Spreo 598, 614
rufivertex, Iridosornis 772
rufivirgatus, Arremonops 266, 267
rufoaxillaris, Molothrus 370, 371, 386, 391,
392, 393, 398, 401, 408, 409, 426, 427, 432*,
766, 767
rufobrunneus, Serinus 774
rufocinetus, Passer 533, 564
rufogularis, Anthochaera 116, 119, 120, 144,
160*, 163
rufogularis, Conopophila 115, 117, 119 (auch
als Myzomela), 140, 160*, 161
rufogularis, Myzomela (statt Conopophila) 119
rufonuchalis, Parus 6, 7, 17
rufopieta, Lagonosticta 487, 488, 498, 526
rufoscapulatus, Plocepasser 774
rufostrigata, Acanthis 445, 471
rufosuperciliaris, Hemispingus 771
rufum, Conirostrum 773
rufus, Furnarius 392, 397 —399
rufus, Philydor 282
rufus, Tachyphonus 279, 281, 285, 286, 304*,
308, 396
rufusater, Creadion 645, 648
ruki, Rukia 769
Rukia longirostra 769
— oleaginea 769
— palauensis 769
— ruki 769:
rupicola, Sitta 765
rushiae, Pholidornis 516
russi, Quelea 551
rustica, Emberiza 166, 168, 179, 180, 181, 184,
224*, 231
rustica, Haplospiza 770
rustica, Hirundo 139, 177, 194, 252, 296, 322,
325, 327, 334, 521, 530, 542
ruthenus, Perisoreus 709, 740
ruticilla, Setophaga 322, 329, 334, 344, 403/4
rutila, Emberiza 183, 232
rutilans, Passer 523, 532, 563, 564
rutilus, Thryothorus 396
Saatkrähe 655
sabinjo, Euplectes 588
sachalinensis, Carpodacus 433, 449, 47
sachalinensis, Emberiza 233
sacharina, Coereba 353
Säulengärtner 665
saffordi, Myzomela 119, 122, 149
sagittatus, Oriolus 623, 624, 627, 666
sagittirostris, Viridonia 773
saharae, Passer 566
sahari, Emberiza 176, 228
saira, Piranga 309
saissanensis, Passer 534
sakalava, Ploceus 519, 522, 547, 581
Sakesphorus 398
— bernardi 394
sakhalinensis, Pinicola 450 , 480
salicamans, Carduelis 444, 467
salicaria, Passerina 276, 277
salicarius, Parus 6, 74
saliens, Nectarinia 69, 90
sallaei, Granatellus 336, 350, 351
salmoni, Chrysothlypis 771
salmoni, Psarocolius 370, 373, 410
Salpinctes 321
Salpornis 36
— spilonotus salvadori 36, 37, 41
— — spilonotus 37, 41
Salpornithinae 36
Saltator 166, 214, 219, 222, 278, 383, 387, 388,
398, 449, 454
— albieollis 275
— — furax 167, 275
— — guadelupensis 275
— — perstriatus 275
— — striatipectus 275
— atriceps atriceps 273
— — lacertosus 273
— — peeti 273
Saltator atricollis 275
— atripennis atripennis 273
— aurantürostris albociliaris 167, 275
— — aurantirostris 275
— caerulescens 285
— ceinetus 771
— coerulescens azarae 274
— — brewsteri 167, 274
— — ceoerulescens 167, 274
— — grandis 274
— — mutus 274
— — olivascens 167, 274
— — plumbiceps 274
— — vigorsiü 274
— — yucatanensis 274
— laticlavius 275
— magnus 273
— maxillosus 771
— maximus intermedius 167, 273
— — magnoides 222, 273
— — maximus 167, 273
— — medianus 273
— orenocensis orenocensis 222, 272°, 274
— rufiventris 275
— similis ochraceiventris 274
a rienla 165—167, 202, 521
— multicolor 218, 260
saltonis, Zonotrichia 238
salvadori, Salpornis 36, 37, 41
salvadorii, Eudynamys 117, 135
salvadorii, Onychognathus 596, 604, 610, 775
salvadorii, Sphecotheres 608*, 626, 629
salvadorii, Zosterops 769
salvini, Camarhynchus 213, 263
salvini, Spindalis 289, 311
salvinii, Icterus 4/4
samoensis, Gymnomyza 116, 123, 129, 137, 158
samoensis, Leptornis 606
samoensis, Zosterops 769
samueli, Sporophila 238
samuelis, Meliphaga 126, 152
sanaka, Sporophila 238
sanblasiana, Cissilopha 675, 708, 732
sanbornis, Zonotrichia 190, 191, 240
sanctaecrucis, Zosterops 769
sanctithomae, Ploceus 519, 549, 585
sandwichensis, Ammodramus 168, 194, 195, 243,
244
sandwichensis, Passerculus 244
sangirensis, Nectarinia 52, 62, 85
sanguinea, Himatione 355, 357
sanguinea, Rhodopechys 431, 433, 442, 446,
474
- sanguineus, Pyrenestes 294
sanguinipectus, Aethopyga 76, 95
sanguinolenta, Myzomela 115, 121, 122, 148,
160*
sanguinolenta, Piranga 309
859
sanguinolentum, Dicaeum 4, 47
sanguinolentus, Ramphocelus 281, 310
sanguinolentus, Uragus 447, 475
santovestris, Aplonis 775
sarasinorum, Myza 770
Sarcops 593, 602
— calvus 592
— — cealvus calvus 594, 602, 621
— — melanotus 594, 602, 621
sardonius, Corvus 698, 724, 755
Saroglossa 591
— aurata 592, 599, 614
— madagascariensis 6/4
— spiloptera 591, 592, 399, 608*, 614
sassi, Euplectes 554, 589
sassil, Serinus 437, 457
satunini, Parus 23
saturata, Aethopyga 76, 95
saturata, Amblyospiza 571
saturata, Diglossa 302, 320
saturata, Euphonia 772
saturatior, Dendrocitta 713, 743
saturatior, Nectarinia 51 —53, 57, 61, 85
saturatior, Sitta 27, 34
saturatus, Hylophilus 352*, 362, 367
saturatus, Mimus 392, 398
saturatus, Passer 567
saturnus, Dierurus 334, 339
savanna, Ammodramus 168, 194, 244
savannarum, Ammodramus 196, 246
Saxaulhäher 716
Saxicola 5
— rubetra 551
saxicola, Pseudopodoces 716, 720*, 748
Saxicoloides fulicata cambaiensis 169
sayaca, Thraupis 203, 280, 281, 291, 292, 297,
299, 304*, 312, 313, 399, 878
Sayornis nigricans 401
— phoebe 403, 404
saypani, Zosterops 105
scandens, Climacteris 37, 41
scandens, Geospiza 766
seandulaca, Certhia 39
Scaphidura 369— 373, 375—377, 382, 391, 395,
405409, 410, 429
— oryzivora 374, 375, 381, 404, 405, 407, 408
— — impacifa 370, 371, 404, 429
— — oryzivora 370, 371, 404, 429, 432*
scapularis, Caryothraustes 221, 273
scapulatus, Corvus 759
Scenopoeetes 663, 674
— dentirostris 665, 670
schaeferi, Passer 532, 564
Schalldrossel 681, 682
Schildrabe 725, 728
schistacea, Nigrita 487, 488, 492
schistacea, Sporophila 256
schistacea, Zonotrichia 188, 236
860
schistaceiceps, Dicaeum 47
schistaceus, Atlapetes 217, 268
Schistochlamys atra 305
— capistratus 305
— leucophaeus 282, 305
— melanopis 280
— — amazonica 283, 305
— — melanopis 281, 282, 305
— — olivina 282, 305
— ruficapillus 280
— — ruficapillus 282, 305
schlegeli, Arremon 771
Schließbeutelmeise 5
Schmalschnabelparadieselster 684
Schmalschnabelsichelhopf 684
schoeniclus, Emberiza 53, 165, 166, 168, 178 bis
181, 185, 186, 224*, 234, 235, 298, 390
schoenobaenus, Acrocephalus 59, 76
Schopfblaurabe 706
schrankii, Tangara 772
schulzei, Thraupis 293, 314
Schwalben 196, 303
Schwalbenstare 649, 672*
Schwalbentangaren 278
Schwanzmeisen 3, 4, 32*, 36
Schwanzstelzer 398
Schwarzkehlchen 5
scirpaceus, Acrocephalus 180, 208, 209
scirpicola, Geothlypis 331, 345
Seissirostrum 591
— dubium 592, 603
— — dubium 622
sclateri, Agelaius 377
sclateri, Cacicus 371, 377, 412, 774
sclateri, Dendrocitta 713, 743
sclateri, Hylophilus 773
sclateri, Meliarchus 770
sclateri, Myzomela 122, 749
sclateri, Nectarinia 515, 783
sclateri, Parus 16
sclateri, Tanagra 312
Sclerurus albigularis albigularis 302
Scolecophagus 390
— ferrugineus 426
scolopacea, Eudynamys 117, 135, 602, 682 (als
scolopaceus), 710, 715, 719, 736*
scolopaceus, Eudynamys 682
scotica, Loxia 451, 81, 492*
scoticus, Parus 19
scotops, Serinus 437, 458
scotti, Aimophila 199, 251
scotti, Zosterops 110
scutata, Lonchura 487 —491, 509, 527
scutatus, Malimbus 519, 549, 583
scutopartitus, Malimbus 549, 583
sechellarum, Foudia 775
sefilata, Parotia 776
seheria, Aethopyga 52, 53, 75, 76 (einmal als
jugularis s.), 77, 95
Seidenlaubenvogel 666
Seidenschwanz 175, 454
seimundi, Anthreptes 82
seimundi, Nectarinia 53, 56, 82
Seiurus 192, 214, 331, 332, 336, 530
— aurocapillus 330, 335, 403, 404, 530 (als
aurocapilla)
— — aurocapillus 322 (als aurocapilla), 329,
344, 352*
— motacilla 322, 330, 344, 404
— notabilis 344
— noveboracensis 322, 330, 344
seledon, Tangara 279, 296, 297, 298, 317
Seleucides 683
— ignotus 692
Seleucidis 676, 678
— melanoleuca auripennis 677, 683, 692
— — melanoleuca 683, 692
semibrunneus, Hylophilus 773
semicervina, Phaeothlypis 335, 350
semicinereus, Hylophilus 773
semideserti, Serinus 433, 438, 459
semiflavus, Geothlypis 331, 345
semifuscus, Chlorospingus 771
semilarvatus, Parus 768
Semioptera 683
— wallacei 776
semirufus, Atlapetes 771
semitorquata, Arremon 216, 266
semperi, Leucopeza 773
semperi, Zosterops 105
senegala, Lagonostieta 487, 490, 498, 524— 526
senegalensis, Anthoscopus 12
senegalensis, Bubalornis 558
senegalensis, Nectarinia 25, 51—53, 57 (vor
saturatior einfügen!), 60, 61, 74, 84, 85,
96*, 146 ;
senegalensis, Zosterops 99, 100, 110
senex, Sturnus 591, 594, 614
senicula, Pipilo 214, 265
sennetti, Ammodramus 195, 245
sennetti, Icterus 370, 379, 380, £15
sennetti, Parus 24
sepiarium, Malacocincla 530
septemstriata, Emberiza 177, 229
septentrionalis, Aimophila 765
septentrionalis, Geospiza 168, 764, 765
septentrionalis, Parus 75
septentrionalis, Zonotrichia 190, 239
sequestratus, Parus 24
serena, Vidua 558
sericea, Loboparadisea 776
sericea, Meliornis 158
sericea, Nectarinia 25, 50—53, 62, 63, 66, 85, 86
sericea, Pica 715, 746
sericeus, Molothrus 428
sericeus, Sturnus 600, 615
Sericornis sylvia 147
Sericossypha 278
— albocristata 771
Sericulus 663, 664, 666 — 668
— aureus 776
— bakeri 776
— chrysocephalus 664, 666, 670, 672*
— — rothschildi 670, 672*
Serilophus 631
Serinus 359, 430, 431, 435, 436, 438, 439, 441
— alario 431
— — alario 441, 463
— — leucolaema 434, 441, 463
— albogularis 440
— — albogularis 439, 461
— — erocopygius 433 (errore albigularis cro-
copygia), 439, 461
— — hewitti 440, 461
— — sordahlae 433 (als albigularis s.), 439, 461
— ankoberensis 774
— atrogularis atrogularis 438, 459
— — deserti 430, 431, 433, 435, 438, 459
— — impiger 433, 438, 459
— — ]wenarum 431, 438, 459
— — reichenowi 437, 438, 458
— — semideserti 433, 438, 459
— — somereni 438, 458
— burtoni 774
— canaria 202, 436, 456, 457
— canicollis 431, 436, 439, 441
— — canicollis 437, 457
— — flavivertex 437, 457
— — sassıl 437, 457
— — thompsonae 437, 457
— capistratus capistratus 437, 458
— citrinella 431, 436, 440
— — citrinella 433, 436, 457
— — corsicana 436, 457
— ceitrinelloides 431, 458
— — eitrinelloides 437, 458
— — frontalis 458
— — hypostietus 433, 437, 458
— — kikuyensis 437, 458
— eitrinipectus 774
— donaldsoni buchanani 438, 460
— estherae 774
— flaviventris 431, 438
— — damarensis 439, 460
— — dorsostriatus 439, 460
— — flaviventris 433, 437 (als C.), 439, 460
— — maculicollis 438, 460
— — marshalli 433, 439, 460
-— — quintoni 439, 460
— frontalis frontalis 437, 458, 496*
— gularis 440
— — endemion 440, 461, 462
— — gularis 440, 461
861
Serinus gularis humilis 440, 462
— hartlaubii 459
— koliensis 774
— leucopterus 440, 462, 774
— leucopygius 436
— — leucopygius 437, 458
— — riggenbachi 437, 458
— menachensis 774
— mennelli 440,462
— mozambicus 436
— — barbatus 438, 459
— — caniceps 430, 434, 438, 459
— — granti 488, 459, 460
— — ieterus 460
— — madaraszi 460
— — mozambicus 433, 438, 459, 460
— — pseudobarbatus 460
— — punctigula 438, 459
— nigriceps 430, 437, 457
— pusillus 431, 433, 436, 456, 767
— rufobrunneus 774
— scotops scotops 437, 458
— — transvaalensis 437, 458
— — umbrosus 437, 458 (einmal als umbrinus)
— serinus 433, 436, 437, 438, 443, 456, 457
— — germanicus 256
— striolatus 431, 436, 437, 441, 527
— — affinis 440, 462
— — graueri 433, 440, 462
— — striolatus 440, 162
— — whytii 440, 462
— sulphuratus 431
— — frommi 439, 461°
— — sharpii 438, 439, 460
— — shelleyi 433, 437, 439, 461
— — sulphuratus 439, 461
— — wilsoni 439, 461
— syriacus 436, 461
— thibetanus 434, 436 (als Carduelis th.), 457,
774
— totta 432
— — symonsi 441, 463
— — totta 440, 162
— — tristriatus 431, 437, 440, 462
serinus, Serinus 433, 436, 437, 438, 443, 456,
457
Serpophaga 398
Setophaga 321, 325, 334, 347, 348, 398
— ruticilla 322, 329, 334, 344, 403/4
severtzovi, Carpodacus 433, 449, 479
sharpei, Dicrurus 632, 633, 639
sharpei, Meliphaga 115, 119, 123, 124, 150
sharpei, Sicalis 168, 204, 255
sharpei, Sporophila 207, 257
sharpei, Tiaris 267
sharpii, Cinnyrieinclus 775
sharpii, Corvus 724, 756
sharpü, Lonchura 490, 515
862
sharpii, Ploceus 572
sharpii, Serinus 438, 439, 460
shelleyi, Aethopyga 52, 53, 75, 95
shelleyi, Cryptospiza 774
shelleyi, Nectarinia 51, 71, 92
shelleyi, Nesocharis 487, 491, 492
shelleyi, Passer 533, 564
shelleyi, Ploceus 578
shelleyi, Serinus 433, 437, 439, 461
shelleyi, Spreo 598, 614
shellyae, Nectarinia 75, 95
shufeldti, Junco 192, 242
Sialia 220, 223
siamense, Dicaeum 47
siamensis, Zosterops 96*, 99, 104
sibilatrix, Phylloscopus 206, 208, 521, 550
sibiricus, Corvus 761
sibiricus, Cractes 740
sibiricus, Uragus 430, 431, 433, 447, 449, 475
Sicalis 165 (errore Sitagra), 166, 167, 336, 398,
521, 878
— auriventris 204, 255
— citrina browni 203, 255
— — citrina 208, 255
— columbiana columbiana 204, 255
— — goeldii 204, 255
— flaveola 534
— — flaveola 204, 255, 314, 394, 534 (als Art)
— — pelzelni 201, 204, 255, 392, 534 (als Art)
— Jlutea 166, 204, 205, 255
— luteocephala 204, 255
— luteola 204
— — luteiventris 204, 205, 255
— olivascens 166, 204
— — lebruni 204, 255
— pelzelni 534 (s. auch S. flaveola)
— raimondii 168, 205, 256
— taczanowskii 770
— uropygialis sharpei 168, 204, 255
— — uropygialis 204, 255
siemiradzkii, Carduelis 774
siemsseni, Latoucheornis 770
sigillifera, Erythrura 507
signatus, Basileuterus 773
silens, Arremon 266
similis, Saltator 274
simplex, Anthreptes 54, 80
simplex, Chlorocichla 182, 453
simplex, Passer 533, 534, 566
simplex, Sporophila 209, 259
simplex, Zosterops 100, 103, 104
sinaloae, Corvus 722, 754
sinensis, Dendrocitta 743
sinensis, Garrulus 738
sinensis, Lonchura 513
sinensis, Sitta 29
sinensis, Sturnus 592, 600, 601, 619
sinensis, Urocissa 740
singalensis, Anthreptes 50—52, 54, 55, 63, 80
singalensis, Chalcoparia 80
Singammer 402, 403
Singdrossel 222, 279, 289, 387, 388, 395, 450,
598, 701
Singvögel 165, 371, 407, 522, 523
sinica, Carduelis 175, 431, 434, 441, 442, 443,
448, 464, 465
sinica, Chloris 441
sinica, Dendrocitta 713, 743
sinuatus, Cardinalis 221, 271, 272*, 273, 402
sinuatus, Corvus 697, 726, 736*, 760
sinuosa, Geothlypis 331, 345
sipahi, Haematospiza 433, 450, 481
siparaja, Aethopyga 51—53, 75, 76, 95, 96*, 97
Sitagra 518, 538, 540—543, 545, 546, 573,
575—580, 878
Sitella 25
Sitta 7, 25, 26—28, 36, 123, 140, 321, 330, 336,
521, 542
— azurea nigriventer 27, 34
— caesia (recte europaea c.) 531
— canadensis 27, 31, 32*
— carolinensis 27
— — aculeata 27, 31
— — atkinsi 27, 31
— — carolinensis 27, 31
— — cookei 26, 31
— — nelsoni 3]
— — tenuissima 31
— castanea 26
— — almorae 26, 30
— — cashmirensis 26, 30
— — castanea 30
— — cinnamoventris 26, 28, 30
— — koelzi 30
— — neglecta 30
— europaea 26, 27
— — affinis 29
— — albifrons 29
— — amurensis 29
— — asiatica 26, 29, 32*
— — baicalensis 29
— — britannica 29
— — caesia 26, 29
— — europaea 29
— — hassica 29
— — homeyeri 29
— -— persica 29
— — sinensis 29
— formosa 28, 34
— frontalis 27
— — frontalis 26, 27, 34
— — saturatior 27, 34
— himalayensis 26, 30
— krueperi (auch krüperi) 26, 27, 31
— leucopsis 27
— — leucopsis 31
Sitta magna 768
— nagaensis 26
— — nagaensis 26, 29
— neumayer 25, 26, 27, 28
— — neumayer 31
— — rupicola 764
— — syriaca 31
— — zarudnyi 31
— pusilla 26, 27
— — caniceps 30
— — pusilla 30
— pygmaea 26, 27
— — ]leuconucha 30
— — melanotis 30
— — pygmaea 30
— solangiae 768
— tephronota 25, 27, 32*
— — tephronota 26, 31
— vietoriae 768
— villosa 768
— whiteheadi 27, 30
— yunnanensis 768
sitticolor, Conirostrum 336, 351
Sittidae 3, 25, 768
Sittinae 25, 26
Sittiparus 6, 24
sittoides, Diglossa 320
sociabilis, Psaltriparus 10
socialis, Spizella 247
socius, Philetairus 496*, 523, 531, 560
socorroensis, Pipilo 770
socotrana, Emberiza 770
socotranus, Rhynchostruthus 774
soemmeringii, Corvus 698, 719, 750
solangiae, Sitta 768
solaris, Nectarinia 768
soligena, Estrilda 504
solitarius, Cacicus 359, 370, 377, 378, 412
solitarius, Vireo 359, 365, 366
solomkoi, Fringilla 435, 256
somereni, Anthreptes 53, 55, 81
somereni, Serinus 488, 458
songarus, Parus 6, 15
sonora, Ptilotis 751
sonorana, Dendroica 325, 340
sonoriensis, Agelaius 218
sophiae, Leptopoecile 7
sordahlae, Serinus 433, 439, 461
sordida, Emberiza 185, 233
sordida, Thlypopsis 280, 282, 284, 306, 399
sordida, Vermivora 323, 338
sordidus, Artamus 653
sordidus, Philemon 132, 133, 156
Sorella 518, 534, 535, 568
soror, Euplectes 589
soudanensis, Pytilia 493
souimanga, Nectarinia 51, 53, 66, 67, 88
sowerbyi, Coccothraustes 453, 485
863
spaldingi, Cracticus 660
sparsimstriata, Nigrita 487, 492
sparverioides, Cuculus 53
Spatz 73, 200, 535
Spechte 25, 387
Spechtmeise 542
speciosa, Geothlypis 773
speciosum, Conirostrum 773
spectabilis, Arremon 216, 266
spectabilis, Lonchura 514
speculifera, Diuca 202, 253
speculiferus, Nesospingus 281, 283, 305
speculigera, Conothraupis 771
speculigerus, Coccothraustes 454, 485
Speculipastor bicolor 592, 598, 613
Speirops 99
— brunnea 769
— leucophoea 99, 112
— lugubris 99
— — lugubris 112
— — melanocephala (als melanocephalus) 712
spekei, Ploceus 519, 520, 543, 578
spekeoides, Ploceus 775
Spelaeornis 330
sperata, Nectarinia 50, 52, 62, 64, 85
Sperling 61, 63, 70, 176, 211, 279, 296, 325,
441, 517, 518, 527, 531, 533, 536, 547
Sperlingsvögel 3, 392
Sperlingsweber 517
Spermestes 487, 509, 510
— cucullata 509
spermologus, Corvus 698, 751
Spermophaga guttata 488, 495
— haematina haematina 488, 490, 495
— — pustulata 488, 490, 495
— ruficapilla 487, 488
— — ruficapilla 488—490, 495
— poliogenys 774
Spermophila 257 — 260
— hypoleuca 258
— superciliaris 256
Spermospiza 495
Sphecotheres 623, 654
— dlaviventris flaviventris 626, 630
— hypoleucus 775
— wvieilloti 626
— — salvadorii 608*, 626, 629
— — vieilloti 623, 626, 629
— viridis 629, 775
Sphenostoma 3
sphenurus, Emberizoides 167, 205, 256
spilonotus, Parus 7, 22, 23
spilonotus, Ploceus 520, 545, 579
spilonotus, Salpornis 36, 37, £1
spiloptera, Saroglossa 591, 592, 599, 608, 614
Spindalis 278
— zena dominicensis 280, 289, 311
— — multicolor 311
364
Spindalis zena nigricephala 280, 290, 312
— — portoricensis 281, 289, 311
— — pretrei 280, 289, 312
— — salvini 289, 311
spinescens, Carduelis 774
spinoides, Carduelis 431, 433, 436, 441, 42,
443, 465
Spinus 430, 435—437, 440, 441, 443, 444, 457,
458, 465 —467
spinus, Carduelis 433, 436, 443, 165
Spiza 165, 166, 223, 403
— americana 168, 219, 270, 272*
spiza, Chlorophanes 282, 300, 301, 304*, 319,
320
Spizella 166, 167, 197, 403, 449
— arborea 197
— — arborea 168, 197, 247
— — ochracea 197, 247
— atrogularis 166, 294 (als atrigularis), 401
— — cana 198, 248
— — caurina 198, 248
— — evura 198, 248
— breweri 198
— — breweri 248
— — taverneri 248
— monticola 166, 247
— pallida 198, 248, 404
— passerina 165, 166 (als Ammodramus), 189
(als Ammodramus), 198, 203, 403, 404
— — arizonae 197, 224*, 247
— — mexicana 197, 247
— — passerina 197, 247
— pusilla 197, 199, 404
— — arenacea 197, 248
— — pusilla 168, 197, 248
— — wortheni 197, 248
— socialis 247
splendens, Corvus 695—698, 717, 719, 723,
736*, 751
splendens, Volatinia 168, 205, 256, 272*
splendida (s. splendidus), Nectarinia 93
splendidissima, Astrapia 776
splendidus, Cinnyris 93
splendidus, Lamprotornis 592 —594, 597, 612
splendidus (besser splendida), Nectarinia 93
spodiogenys, Fringilla 455
Spodiopsar 591, 601, 615, 618
spodocephala, Emberiza 166, 168, 171, 179,
180, 183, 184, 185, 209, 233
Sporaeginthus 487, 502, 504
Sporophila 54, 165, 166, 205, 206, 207, 208, 210,
311, 290, 302, 321, 325, 398
— albogularis 770
— americana 168, 207
— — americana 168, 208, 257
— — aurita 208, 257
— — corvina 208, 257
— — ophthalmica 257
Sporophila ardesiaca 770
— bouvreuil bouvreuil 259
— — pileata 259
— caerulescens 203, 207, 208
— — caerulescens 258
— — hellmayri 258
— castaneiventris 168, 207, 209, 210, 259
— cinnamomea 770
— collaris melanocephala 257
— faleirostris 770
— frontalis 256
— grisea 256, 257
— gutturalis 258
— hypochroma 770
— hypoxantha 167, 207, 259
— insulata 770
— intermedia 207
— — intermedia 208, 209, 257, 272*
— leucoptera cinereola 207, 209, 258
— lineata 257
— lineola 208
— — bouvronides 207, 257, 258, 272*
— — lineola 168, 258
— luctuosa 207, 208, 258
— melanogaster 770
— melanops 770
— minuta 396
— — minuta 168, 207, 209, 259, 272*
— — parva 207, 259
— nasesus 259
— nigricollis 208
— — nigricollis 208, 258
— nigro-aurantia (heute nigroaurantia) 259
— nigrorufa 770
— obscura haplochroma 207, 258
— — obscura 207, 208, 258
— — pauper 208, 258
— ocellata 258
— ornata 258
— palustris 770
— peruviana devronis 209, 259
— — peruviana 207, 209, 259
— plumbea plumbea 207, 208, 257
— ruficollis 207, 209, 259
— schistacea longipennis 256
— simplex 209, 259
— telasco 210, 219, 260
— torqueola 402
— — morelleti 207, 208, 257
— — mutanda 257
— — sharpei 207, 257
— — torqueola 207, 257
Sporopipes 517, 519, 520, 522
— frontalis 520
— — emini 523, 537, 571
— — frontalis 537, 571
— squamifrons 497*, 522, 523, 536, 553, 571
Sporothraupis 279, 292, 313
Spottdrosseln 403
Spreo 598
— albicapillus 592, 598, 613
— bicolor 592-594, 596, 598, 613
— fischeri 592, 598, 613
— hildebrandti 591, 598
— — hildebrandti 598, 608*, 614
— — shelleyi 598, 614
— pulcher 592
— — pulcher 598, 613
— — rufiventris 598, 614
— superbus 592, 593, 598, 613, 767
spurius, Icterus 370, 371, 380, 401, £15
squalidus, Piprisoma 43, 45
squamata, Lichmera 115, 121, 147
squamata, Stigmatops 147
squamiceps, Lophozosterops 769
squamicollis, Lonchura 5/1
squamifrons, Oculocincta 769
squamifrons, Sporopipes 497*, 522, 523,
553, 971
Stärlinge 175, 352*, 369, 371, 400%, 432*
stalkeri, Tephrozosterops 769
Stare 3, 137, 146, 387, 395, 538, 555, 991,
599, 604, 608*, 623
Steatornis 381
Steganopleura 487, 506
Steganura 518, 527 —529, 558
— paradisea 491, 527, 528
stegmanni, Cyanopica 696, 697, 712, 742
stegmanni, Uragus 447, 475
Steinsperling 535
stejnegeri, Carduelis 444, 466
stejnegeri, Viridonia 355, 357
stejnegeri, Zosterops 99, 103
Stelgidopteryx 303
stelleri, Cyanocitta 695—697, 701, 729
stentor, Plocepasser 523, 530, 560
stephaniae, Astrapia 684, 685, 687, 693
Stephanie-Paradieselster 685
Stephanophorus 278, 280, 291, 293
— diadematus 293, 304*, 314
— leucocephalus 3/4
stephanophorus, Ploceus 540, 574
stephensi, Vireo 363
stephensi, Zonotrichia 188, 237
sterea, Passerina 168, 223, 276
sterrhopteron, Wetmorethraupis 772
stevensi, Dierurus 641
stewarti, Emberiza 175, 227
stietifrons, Ploceus 548, 583
sticetocephalus, Pycnopygius 769
Stictospiza 487, 504
stictothorax, Eucometis 280, 281, 285, 307
Stieglitz 436, 443
stierlingi, Zosterops 100, 110
Stigmatops 120, 121, 148
— squamata 147
55 Oologie, 40. Lieferung
936,
593,
Stigmatops subocularis /47
stigmatops, Dierurus 635, 641
Stirnvögel 407
Stizoptera 487
stoddardi, Dendroica 326, 342
stoliczkae, Passer 523. 561
stoliczkae, Remiz 5, 12
stolzmanni, Aimophila 168, 199, 250
stolzmanni, Chlorothraupis 771
stolzmanni, Urothraupis 771
Stomiopera 128, 153
stonei, Quiscalus 389, 424
stonü, Ailuroedus 664, 669
stracheyi, Emberiza 168, 172, 173, 226
stragulatus, Basileuterus 350
strenua, Zosterops 99, 101, 102, 108
Strepera 645, 646, 654, 657, 723
— fuliginosa 658, 661
— graculina 658
— — ashbyi 698, 661
— — crissalis 658, 661
— — graculina 645, 654, 658, 661
— — robinsoni 658, 661
— versicolor arguta 658, 662
— — howei 658, 661, 672*
— — intermedia 658, 662
— — melanoptera 654, 658, 661
— — plumbea 658, 661
— versicolor 658, 661
— — vieilloti 661
Streperidae 654
Streperinae 654
Streptocitta albertinae 775
— albicollis 775
stresemanni, Zavattariornis 715, 747
stresemanni, Zosterops 769
striata, Aplonis 775
striata, Dendroica 322, 329, 344
striata, Lonchura 487, 510
striata, Muscicapa 204, 210
striata, Neositta 35
striaticeps, Arremonops 167, 267, 394
striatipectus, Saltator 275
striativentris, Melanocharis 42, 45, 764
striatus, Oriolus 627
striatus, Pardalotus 48
striatus, Ploceus 581
Strichelhäher 708
strietus, Euplectes 551, 586
strigata (recte strigiceps), Aimophila 250, 878
strigata, Aplonis 595, 607
strigatus, Chondestes 198, 249
strigiceps, Aimophila 199, 250 (als strigata)
striolata, Emberiza 176, 177, 178, 183, 184,
228, 229
striolatus, Serinus 431, 433, 436, 437, 440, 441,
462, 527
strophium, Nectarinia 51, 72, 92
jo] 0167
Struthidea 646, 695
— cinerea 647, 648, 672*
st. thomae, Ploceus 583
stuhlmanni, Nectarinia 68, 89
stuhlmanni, Ploceus 523, 588, 572
stuhlmanni, Poeoptera 775
stuhlmanni, Zosterops 110
stupae, Parus 21
Sturnella 200, 370, 372, 384, 419, 420
— magna 283, 386, 402, 403
— — alticola 386, 421
— — argutula 385, 400*, 421
— — auropectoralis 386, 421
— — hippocrepis 421
— — hoopesi 386, 421
— — inexpectata 371, 372, 386, 421
— — magna 371, 383, 385, 420, 421
— — meridionalis #21
— — mexicana 385, 386, 421
— — praticola 371, 421
— neglecta 215, 386, 421
Sturnia 591, 599-601, 615, 616, 619
Sturnidae 137, 146, 450, 591, 593, 599, 603,
623, 645, 699, 717, 775
Sturniden 599
Sturninae 591
sturninus, Sturnus 591, 600, 601, 616
Sturnopastor 591, 601, 618
Sturnornis 599, 601, 614
Sturnus 337, 395, 591, 600, 601, 623, 708
— burmanicus 592
— — burmanicus 601, 619
— — leucocephalus 601, 619
— cineraceus 592, 601, 618
— contra 592
— — contra 601, 618
— — dehrae 618
— — floweri 601, 618
— — jalla 601, 618
— — superciliaris 601, 618
— erythropygius 592
— — andamanensis 600, 615
— — erythropygius 600, 615
— loyca 420
— malabaricus 592, 599, 602
— — assamicus 599, 615
— — blythii 599, 615
— — malabaricus 594, 599, 615
— — nemoricola 599, 615
— melanopterus 592
— — melanopterus 601, 619
— — trieolor 601, 619
— nigricollis 592, 594, 601, 619
— pagodarum 592, 600, 615
— philippensis 592 (als philippinus), 600, 615
— roseus 591, 592, 594, 600, 601, 608*, 616
— senex 591, 599, 614
— sericeus 600, 615
Sturnus sinensis 592, 600, 601, 619
— sturninus 591, 600, 601, 616
— turdiformis 619
— unicolor 592, 601, 618
— violaceus 615
— vulgaris 387, 538, 555, 591, 592, 599, 600,
601, 724
— — caucasicus 600, 617
— — faroensis 591, 600, 616
— — graecus 600
— — grandis 600
— — humii 591, 600, 617
— — indicus 617
— — minor 601, 617
— — nobilior 600, 617
— — oppenheimi 608*
— — poltaratskyi 600, 617
— — porphyronotus 600, 617
— — purpurascens 600, 608* (als purpuras-
cons), 617
— — tauricus 600, 608*, 617
— — vulgaris 594, 596, 600, 601, 616, 767
— — zetlandicus 600, 616
stygius, Lonchura 487 (als stygia), 515
suahelica, Nectarinia 72, 92
suahelicus, Euplectes 555, 589
suahelicus, Ploceus 539, 574
subalaris, Amblyornis 665, 670
subalaris, Macroagelaius 774
subalaris, Nectarinia 68, 89
subalter, Manucodia 672*, 680, 682, 690
subaureus, Ploceus 519—521, 540, 575
subcastanea, Lonchura 514
subcollaris, Anthreptes 55, 81
subcorax, Corvus 698, 727, 761
subcorniculatus, Philemon 770
suberistata, Lophozosterops 100, 102, 109
suberistatus, Melophus 225
subflava, Amandava 490, 491, 492*, 504, 527
(als Estrilda)
subflava, Estrilda (recte Amandava) 527
subflavescens, Cyclarhis 360, 363
subflavum, Dicaeum 46
subfrenata, Meliphaga 115, 769
subgermana, Meliphaga 125, 151
subhimachalus, Pinicola 774
subocularis, Stigmatops 147
subpersonatus, Ploceus 775
subsquamicollis, Lonchura 510
substriata (recte subtorquata), Zonotrichia 190
substriatus, Pardalotus 44, 48
subtelephonus, Cuculus 226
subtorquata, Zonotrichia 190 (als substriata),
240, 878
subtuberosus, Philemon 134, 135, 157
subulata, Carduelis 433, 469
subundulata, Lonchura 511
subvirgatus, Ammodramus 195, 246
subviridis, Parus 22
suleirostris, Gnorimopsar 387, 422
sulphurata, Emberiza 179, 180, 183, 233
sulphuratus, Pitangus 392, 398, 702
sulphuratus, Serinus 431, 433, 437, 438, 439,
460, 461
sultanea, Melanochlora 6, 8, 24
sumatranus, ÄAnthreptes 54, 80
sumichrasti, Aimophila 770
sumichrasti, Aphelocoma 702, 720*, 731
sumichrasti, Lampropsar 423
Sumpfohreule 765
sumptuosa, Compsocoma 314
sundevalli, Euplectes 552, 587
sundevalli, Zosterops 111
superba, Lophorina 677, 681, 685, 693
superba, Nectarinia 50, 51, 53, 74, 94, 96*
superbus, Cardinalis 271
superbus, Cinnyris 94
superbus, Spreo 592, 593, 598, 613, 767
superciliaris, Abroscopus 4
superciliaris, Hemispingus 771
superciliaris, Leistes 384, 220
superciliaris, Lophozosterops 769
superciliaris, Petronia 535, 536, 569
superciliaris, Spermophila 256
superciliaris, Sturnus 601, 618
superciliaris, Thryothorus 394
superciliosa, Aphelocoma 730
superciliosa, Climacteris £1
superciliosa, Vermivora 324, (als supercilosa)
339
superciliosa, Woodfordia 99, 109
superciliosus, Acanthorhynchus 116, 141, 162
superciliosus, Arremonops 267
superciliosus, Artamus 649, 650, 653, 672*
superciliosus, Oriturus 200, 251
superciliosus, Parus 7, 16
superciliosus, Plocepasser 517, 530, 560
superciliosus, Ploceus 519— 521, 548, 581
supereilosa (statt superciliosa), Vermivora 339
surinamensis, Nemosia 282, 284, 306
surinamus, Tachyphonus 279, 281, 285, 286,
304, 307
suschkini, Emberiza 181, 231
susurrans, Ammodramus 196, 246
Suthora 5
suttoni, Atlapetes 217, 268
svecica, Luscinia 542
swainsoni, Limnothlypis 322, 330, 344
swainsoni, Passer 565
swainsoni, Vireo 367
swinhoei, Cyanopica 697, 712, 742
swinhoei, Lonchura 51/1
Sycalis arvensis 255
Sycobius 517, 518
— rubriceps 584
sycobius, Lamprotornis 597, 611
55*
867
Sycobrotus 518 u. 548 (als Sycobrotes), 582,
583
sylvaticus, Euplectes 586
Sylvia 51
— atricapilla 61, 62, 65, 77, 146, 179, 180, 183,
194, 302
— borin 179, 297, 302, 393
— communis 208
— curruca 77, 299, 325, 380, 408, 625
— nisoria 380
— undata 325
sylvia, Sericornis 147
sylviella, Anthoscopus 2
Sylvien 51
Sylvietta rufescens 25
Sylviidae 3, 100, 113
Sylviiden 36, 140
Sylviparus modestus 8, 24
symonsi, Serinus 441, 463
Symplectes 517, 518, 548, 572, 573, 582, 583
Synallaxis 392, 398
synoicus, Carpodacus 430, 449, 478
syriaca, Sitta 31
syriacus, Serinus 436, 457
szalayi, Oriolus 623, 627
tabuensis, Aplonis 606
tabuensis, Porzana 281
tacarcunae, Chlorospingus 771
tacazze, Nectarinia 51, 53, 71, 91, 92, 96*
Tachycineta leucorrhoa 398
Tachyphonus 286, 399
— coronatus 215, 279, 280, 285, 286, 237, 293,
308, 388
— cristatus 279, 280, 285
— — brunneus 286, 307
— — intercedens 282, 285, 307
— delatrii 772
— leucothorax melanopysgius 285, (als melano-
pogon) 307
— luctuosus 279, 280
— — flaviventris 286, 307, 427
— — ]Juctuosus 285, 286, 307
— melaleucus 308
— phoenicius 230, 281, 287, 308
— rufiventer 772
— rufus 279, 281, 285, 286, 304*, 308, 396
— surinamus 279, 285
— — insignis 286, 307
— — surinamus 281, 285,-286, 304*, 307
taciturnus, Arremon 167, 215, 216, 266, 272*
taczanowskii, Montifringilla 536, 570
taczanowskü, Sicalis 770
taeniata, Dubusia 772
taeniatus, Peucedramus 335, 350
taeniopterus, Ploceus 542, 577
Taeniopygia 487, 506
taeniura, Certhia 37, 40
868
taha, Euplectes 520, 523, 551, 586
tahapisi, Emberiza 168, 177, 178, 224*, 229
tahatali, Ploceus 578
taiti, Aegithalos 9
taivanensis, Passer 567
taivaniana, Zosterops 103
taivanus, Garrulus 697, 738
takatsukasai, Zosterops 105
talatala, Nectarinia 52, 53, 57, 60, 67, 73, 89
talifuensis, Aegithalos 10, 32*
tamarugensis, Conirostrum 773
Tanagra 278, 290, 291— 296, 312—317
— sclateri 312
Tanagrella 278, 291, 319
— ruficollis 320
Tanagridae (jetzt Thraupidae) 278, 301, 304*
Tanagriden (jetzt Thraupiden) 282
tanagrinus, Lampropsar 388, 396, 423, 427
tandae, Amblyospiza 571
tanganjicae, Nectarinia 58, 83
Tangara 278—281, 296, 299, 303
— argyrofenges 772
— arthus 279
— — arthus 281, 297, 304, 317
— boliviana (recte Thraupis) 280, 878
— cabanisi 296, 317
— callophrys 772
— castanonota 318
— cayana 279, 280, (als T. cayana) 293, 396
(als Thraupis)
— — cayana 280, 282, 298, 299, 318
— — margaritae 298, 318
— chilensis 279
— — paradisea 280, 282, 297, 317
— chrysophrys (recte T. guttata bogotensis)
280, 878
— chrysotis 772
— cucullata 279, 280, 298, 299
— — cucullata 298, 304*, 318
— cyanicollis 279, 280
— — caeruleocephala 299, 319
— cyanocephala 279, 296
— — cyanocephala 297, 317
— cyanoptera cyanoptera 281, 299, 319
— cyanotis 772
— cyanoventris 772
— desmaresti 297, 317
— dowii 772
— fastuosa 772
— festiva 317
— florida 772
— guttata bogotensis 280 u. 296 (als chryso-
phrys), 298, 318
— — eusticta 279, 298, 318
— — trinitatis 296, 298, 317, 318
— gyrola 279
— — bangsi 280 (als Art gyruloides), 281, 296,
298, 318, 878
Tangara gyrola viridissima 298, 304*, 318
— gyruloides (jetzt gyrola bangsi) 280, 878
— heinei 280, 292, 299, 319
— icterocephala frantzii 280, 282, 287, 317
— inornata languens 296, 316
— johannae 772
— labradorides 772
— larvata 279, 296
— — franciscae 282 (errore franscicae), 299, 319
— — larvata 282, 299, 319
— lavinia 772
— mexicana 279, 230, 291 (als T. mexicanus)
— — boliviana 296, 297, 299, 317
— — brasiliensis 279 (als Art), 297, 317
— — lateralis 279, 297, 317
— — mexicanus 297, 317
— — vieilloti 280, 296, 298, 304*, 313, 317
— nigrocincta (recte nigroviridis) 280, 878
— nigrocincta 772
— nigroviridis 280 (als nigrocincta), 297, 878
— — cyanescens 299, 319
— obscura (recte Thraupis) 280
— palmeri 772
— parzudaki 772
— peruviana 772
— preciosa 296, 298, 318, 772
— pulcherrima 772
— punctata 772
— ruficapilla (jetzt vitriolina) 280, 378
— ruficervix 772
— rufigenis 772
— rufigula 772
— sayaca (recte Thraupis) 280
— schrankii 772
— seledon 279, 296, 297, 298, 317
— thoracica 317
— trieolor 317
— varia 772
— vassorii 772
— velia 280
— — velia 299, 319
— viridicollis 772
— vitriolina 280 (einmal als ruficapilla), 298,
299, 318, 878
— xanthocephala lamprotis 296, 297, 318
— xanthogastra 772
Tangaren 165, 278, 291, 304*
Tangavius 426
— aeneus 216, 218, 276
tangutorum, Emberiza 173, 227
Tannenhäher 709, 717
tapera, Progne 398
Taraba major 392
tarbagataica, Emberiza 173, 226
tasmanica, Anthochaera 144, 164
tasmanicus, Corvus 725, 758
Tauben 666
tauricus, Sturnus 600, 608*, 617
taverneri, Spizella 248
Tehagra 143, 548, 650
— australis 636
tectirostris, Dicerurus 636, 642
teerinki, Lonchura 774
telasco, Sporophila 210, 219, 260
Telespiza 356, 357
— flavissima 357
Telophorus zeylonus 598
Temenuchus 591, 600, 615
temia, Crypsirina 696, 697, 714, 744
temnurus, Temnurus 776
Temnurus temnurus 776
temporalis, Aegintha 490, 505
tenebridorsa, Estrilda 488, 491, 503, 525, 528
teneriffae, Parus 23
tenuirostris, Acanthorhynchus 116, 119, 141,
160*, 161, 162
tenuirostris, Cassidix £24
tenuirostris, Onychognathus 592, 596, 610
tenuirostris Oriolus 625, 626, 628
tenuirostris, Zosterops 99, 102, 1708
tenuissima, Sitta 31
tephrocotis, Leucosticte 446, 473
tephrogaster, Dierurus 634, 639
tephronota, Sitta 25, 26, 27, 31, 32*
tephronotus, Aegithalos 9
tephronotus, Piras 548, 582
tephropleura, Zosterops 99, 101, 102, 108
Tephrozosterops stalkeri 769
Teretistris fernandinae 333, 346
— fornsi 333, 347
Terpsiphone 114
terraereginae, Gymnorhina 660
tersa, Procnias 320
Tersina 278, 279, 281, 303
— viridis 279
— — oceidentalis 281, 302, 320
— — viridis 302, 320
Tersininae 278, 279
tertius, Calyptophilus 285, 306
testacea, Piranga 309
testacea, Pyranga 309
Tetraenura 526, 558
tetrax, Otis 655
texana, Aphelocoma 702, 731
texana, Cardinalis 271
Textor 518, 529, 538, 544, 558,
— textor 578
teydea, Fringilla 431, 434, 435, 456
thai, Dierurus 634, 640
thalassina, Cissa 696, 712, 741
thamnophila, Pytilia 493
Thamnophilus 143, 321, 325, 636
thanneri, Emberiza 169
theresae, Montifringilla 774
theresae, Onychognathus 592, 396, 610
thibetanus, Carduelis (recte Serinus) 434
559, 571, 573
369
thibetanus, Serinus 434 (als Carduelis), 436,
457, 774
thilius, Agelaius 175, 370, 383, 392, 399, 400*,
417
Thlypopsis 399
— fulviceps 771
— inornata 771
— ornata 771
— pectoralis 771
— ruficeps 771
— sordida 280, 399
— — sordida 282, 284, 306
thomensis, Estrilda 774
thomensis, Nectarinia 51, 58, 83
thompsonae, Serinus 437, 457
thoracica, Poospiza 202, 253
thoracica, Tangara 317
thoracicus, Hylophilus 773
thoraciceus, Prionochilus 768
Thraupidae 165, 200, 219, 278, 279, (als Tana-
gridae: 301, 304*), 398, 403, 450, 521, 771
Thraupiden 299, 393
Thraupinae 278
Thraupis 200, 278, 280, 281,
303, 398, 399, 878
— abbas 281, 292, 313
— boliviana (recte sayaca obscura) 280
— bonariensis 201, 280, 293
— — bonariensis 293, 314
— — darwinii 292, 293, 314
— — schulzei 293, 314
— cana cana (recte episcopus cana) 395
— cayana (recte Tangara) 396
— cyanocephala auricrissa 279, 292, 313
— — buesingi 280, 292, 304*, 313
— — cyanocephala 280, 292, 313
— cyanoptera 281, 292, 313, 772
— episcopus 279—281, 292, (als virens) 396
— — berlepschi 291, 281, 312
— — ceaerulea 291, 281, 312
— — cana 281, 290, 312, 395 (als ce. cana)
— — coelestis 281, 312
— — diaconus 3/2
— — episcopus 281, 291, 312
— — nesophilus 291, 292, 304*, 312
— ornata 292, 313
— palmarum 281, 291
— — melanoptera 281, 291, 292, 304*, 313
— — palmarum 292, 313
— sayaca 203, 280, 292, 297, 299, 399
— — glaucocolpa 292, 304*, 313
— — obscura 2830 (als boliviana), 291, 312
— — sayaca 281, 291, 312
virens (recte episcopus) 396
Threnpläkus 36, 43, 321, 330
— longirostris 284
— pleurostietus 401
— rutilus 396
290, 291—293,
870
Thryophilus superciliaris 394
thura, Carpodacus 433, 449, 478, 479
thurberi, Junco 192, 193, 224*, 242, 243
tianschanica, Loxia 433, 182
tianschanicus, Parus 6, 24
Tiaris 165, 166, 206, 207, 211, 212
— bicolor bicolor 168, 211, 261
— — marchei 261, 272*
— — omissa 168, 261
— — sharpei 261
— canora 167, 211, 260
— fuliginosa 211
— — fuliginosa 261
— — fumosa 261
— olivacea 211, 261
— — bryanti 168, 261
— — coryi 261
— — lepida 261
— — olivacea 261
— — pusilla 260
tibetana, Petronia 536, 569
tibetanus, Corvus 761
tibetanus, Parus 22
tibetanus, Passer 534, 567
tibetosinensis, Corvus 697, 698, 724, 757
tibialis, Pheucticus 220, 270
tibialis, Pselliophorus 218, 268
tibicen, Gymnorhina 654, 656, 658, 660, 661,
672*
ticehursti, Emberiza 181, 231
Tichodroma 25, 26, 537
— muraria 28, 35
— — muraria 26, 35
— — nepalensis 35
Tichodrominae 26
tigrina, Dendroica 322, 328, 343
Timalien 99, 146
Timaliidae 3, 99, 530, 591, 593, 599
Timaliiden 686
Timeliopsis fulvigula 769
— griseigula 769
tingitanus, Corvus 726, 727, 761
tingitanus, Passer 532, 562
tinniens, Cisticola 555
tintillon, Fringilla 455
Tisa 185
tocuyensis, Arremonops 771
toddi, Passerina 167, 222, 275
Todirostrum 301
Töpfervögel 398
togoensis, Lagonosticta 490, 500
togoensis, Vidua 529
tolmiei, Geothlypis 332, 346
Tolmomyias 114
tongensis, Ploceus 540, 575
topela, Lonchura 490, 512
toroi, Pipilo 215, 265, 272*, 428, 432
torquata, Grafisia 775
torquata, Poospiza 203, 254
torquatus, Acridotheres 628
torquatus, Atlapetes 217, 218, 268
torquatus, Corvus 725, 758
torquatus, Cracticus 626, 654, 655, 656, 659,
672*
torquatus, Melidectes 770
torquatus, Myioborus 334, 348
torqueola, Sporophila 207, 208, 257, 402
torquilla, Jynx 717
torrejoni, Chlorophonia 316
Torreornis inexpectata 770
torreyi, Quiscalus 389, 424
torridus, Oryzoborus 210, 260
tortugae, Vireo 360, 364
totta, Serinus 431, 440, 441, 462, 463
townsendi, Dendroica 322, 327, 342
townsendi, Junco 192, 193, 242, 243
townsendi, Passerella 236
Toxorhamphus 118, 120
— novaeguineae 769
— poliopterus 115, 116
— — poliopterus 119, 120, 147
Toxostoma bendirei 401
— redivivum 701
traillii, Empidonax 404
traillii, Oriolus 623, 626, 629
transcaspicus, Passer 523 (als transcaspius),
932, 563
transfuga, Petronia 496*, 535, 568
transpositus, Parus 24, 878
transvaalensis, Euplectes 588
transvaalensis, Serinus 437, 458
travancoreensis, Parus 22
travancorensis, Ploceus 582
traylori, Nectarinia 53 (als minor), 56, 82
trichas, Geothlypis 322, 331, 345, 403, 404, 428,
432
Trichodere 121, 147
Trichothraupis 279, 280, 299/300
— melanops 281, 308
— quadricolor 308
trichroa, Erythrura 487, 488, 507
tricolor, Agelaius 370, 383, 419
tricolor, Atlapetes 771
tricolor, Erythrura 774
tricolor, Ploceus 519, 547, 580
tricolor, Rhipidura 123
tricolor, Sturnus 601, 618
tricolor, Tangara 317
trifasciatus, Basileuterus 773
trifasciatus, Carpodacus 767
trifasciatus, Hemispingus 771
trigonostigma, Dicaeum 33*, 42, 44, 46
trinitatis, Euphonia 279, 282, 294, 315
trinitatis, Icterus 213
trinitatis, Tangara 296, 298, 317, 318
tristis, Acridotheres 592, 594, 602, 619, 620
tristis, Carduelis 430, 433, 441, 444, 466, 467
tristis, Corvus 721, 724, 752, 776
tristissima, Lonchura 774
tristrami, Dieaeum 768
tristrami, Emberiza 179, 230
tristrami, Myzomela 769
tristramii, Onychognathus 596, 610
tristriatus, Basileuterus 335, 350
tristriatus, Serinus 431, 437, 440, 462
trivialis, Anthus 59, 74, 170, 179, 186, 188,
2391, 542
trivirgatus, Aegithalos 9, 32*
trobriandi, Manucodia 681, 691
trochileum, Dicaeum 48
Trochilidae 50
trochiloides, Ieterus 215
trochilus, Phylloscopus 206
Troglodytes 36, 43, 324, 399
— aedon 396
— — aedon 763
— — albicans 394
troglodytes, Estrilda 487/8, 490, 502, 527
Troglodytidae 25, 284, 393, 398, 399, 401
tropieus, Corvus 696, 697, 725, 759
Tropidorhynchus 133—135, 156, 157
— buceroides 157
Trupialis 420
Trypanocorax 695, 753
tsavoensis, Nectarinia 72, 93
tschusü, Carduelis 268
tschusü, Corvus 753
tucumana, Carduelis 443, 466
tucumanensis, Ammodramus 247
tucumanus, Phrysilus 201, 252
Turdidae 114, 335, 383, 403, 450, 593, 598,
699
turdiformis, Sturnus 6/9
Turdus 142, 143, 381, 398, 521, 540
— falcklandii 387
— leucomelas albiventer 395
— merula 197, 279, 281, 288, 384, 454, 593, 597
bis 599, 702, 716
— misratorius 402, 593, 702
— philomelos 203, 222, 279, 281, 289, 383,
387, 388, 395, 449, 450, 555, 593, 598, 701
— ruficollis 392
— viscivorus 596, 604, 702, 716
turgidus, Euplectes 523, 552, 587
turkestanica, Carduelis 433, 442, 464, 767
typhicola, Geothlypis 331, 345
typicus, Corvus 776
Tyrannen 294, 359, 407
Tyrannidae 114, 205, 348, 401, 403
Tyranniden 301, 328, 393
Tyranniscus 301
Tyrannus 398, 631
— melancholiceus 638
tyrannus, Muscivora 398
871
tyrrhenicus, Aegithalos 9
tytleri, Aplonis 592, 595, 607, 608*
ugandae, Anthreptes 81
ugandae, Passer 566
ugandae, Uraeginthus 500
ugiensis, Zosterops 769
ugogoensis, Uraeginthus 500
ultima, Loxioides 356, 358
ultramarina, Aphelocoma 696, 702, 731
ultramarina, Vidua 525, 557
ultramarinus, Parus 23
uluensis, Ploceus 537, 542, 578
umbrina, Leucosticte 431, 446, 473
umbrinus, Corvus 759
umbrosus, Serinus 437, 458 (einmal als um-
brinus), 879
unalaschcensis, Zonotrichia 188, 236
undata, Sylvia 325
undulata, Phylidonyris 770
Unglückshäher 717
unicolor, Amblyospiza 114, 523, 537, 571
unicolor, Aphelocoma 696, 731, 776
unicolor, Cosmopsarus 775
unicolor, Haplospiza 201, 253
unicolor, Meliphaga 116, 119, 128, 153
unicolor, Phrygilus 200, 201, 252, 394
unicolor, Sturnus 592, 601, 618
uniformis, Chlamydera 664, 668, 671
Upupa epops 708
Uraeginthus 487, 491
— angolensis 489, 525
— — angolensis 500
— — damarensis 500
— — niassensis 487, 490, 491, 500
— bengalus bengalus 490, 500
— — brunneigularis 500
— — katangae 500
— — littoralis 500
— — ugogoensis 500
— cyanocephala 501, 528
— granatina 489, 526
— — granatina 490, 501
— ianthinogaster 526
— — janthinogaster 490, 501
Uragus 197, 203, 430, 431, 449
— sibirieus sanguinolentus 447, 475
— — sibirieus 433, 447, 475
— — stegmanni 447, 475
— — ussuriensis 447, 475
Uria 667
Urobrachya 518, 554, 588
Uroeissa 695, 705, 706, 710
— caerulea 696, 710, 740
— erythrorhyncha erythrorhyncha 696, 697,
710, 740
— — magnirostris 696, 697, 711, 720*, 741
— — oceipitalis 697, 698, 710, 711, 740
872
Urocissa erythrorhyncha sinensis 740
— flavirostris 696
— — cucullata 697, 698, 710, 740
— — flavirostris 697, 698, 710, 740
— — ornata 696, 698, 710, 740
— whiteheadi 696
— — whiteheadi 696, 710, 711, 741
Urocynchramus pylzowi 774
Uroleuca 705, 733
Uroloncha 487, 509—512
— pectoralis 512
uropygialis, Cacicus 370, 377, 412
uropygialis, Carduelis 774
uropygialis, Coereba 353
uropygialis, Pardalotus 49
uropygialis, Sicalis 168, 204, 255
uropygialis, Zosterops 769
Urothraupis stolzmanni 771
ursulae, Nectarinia 51, 57, 83
urubambensis, Carduelis 443, 465
ussuriensis, Carduelis 442, 464
ussuriensis, Uragus 447, 475
ustulatus, Catharus 450
usumburae, Ploceus 546, 580
vagabunda, Dendrocitta 696— 698, 712, 713,
720*, 742, 753
vagans, Lonchura 511
validirostris, Melithreptus 131, 755
validus, Corvus 776
vana, Lonchura 774
Vanellus 57
Vanga 646
Vangidae 768
varia, Mniotilta 322, 338, 352*
varia, Tangara 772
variabilis, Emberiza 185, 233
varians, Crypsirina 744
variegatus, Certhionyx 113, 116, 119, 123, 137,
150, 160*
variolosus, Cacomantis 53, 117
varius, Cnemotricus 399
varius, Corvus 726, 760
varius, Fregilupus 775
varius, Parus 7, 24
vassorü, Tangara 772
vatensis, Zosterops 108
vaughani, Zosterops 112
vegeta, Zosterops 108
velata, Geothlypis 322, 332, 346
velatus, Ploceus 519—521, 523, 526, 528, 538,
540, 542, 548, 545, 548, 577, 578
velia, Tangara 299, 319
vellalavella, Zosterops 769
venezuelae, Piranga 282, 310
venezuelae, Zonotrichia 167, 190, 240
venezuelanus, Anisognathus 281 (als venezuelen-
sis), 298, 314
venezuelanus (recte venezuelensis), Rampho-
celus 281
venezuelensis (recte venezuelanus), Anisogna-
thus 281
venezuelensis, ÄArremonops 267
venezuelensis, Diglossa 773
venezuelensis, Molothrus 369, 371, 393, 394,
395, 396, 427, 766
venezuelensis, Ramphocelus 281
zuelanus), 311
venusta, Dacnis 773
venusta, Nectarinia 25, 51, 58, 67, 68, 74, 88, 89,
96*
venustulus, Parus 7, 18
venustus, Granatellus 773
Vermivora bachmanii 322, 338
— celata celata 322, 323, 338
— — lutescens 323, 338
— — orestera 323, 338
— — sordida 323, 338
— chrysoptera 322, 323, 338
— crissalis 324, 339 -
— gutturalis 324, 339
— luciae 324, 339
— peregrina 322, 323, 338
— pinus 322, 323, 338
— rubricapilla 339
— ruficapilla ridgwayi 323, 339
— — ruficapilla 322, 323, 339
— superciliosa mexicana 324,
losa) 339
— — superciliosa 324, 339
— virginiae 323, 339
vermivorus, Basileuterus 349
vermivorus, Helmitheros 322, 330, 344
vernayi, Dendrocitta 712
veroxii, Nectarinia 50, 52, 58, 59, 83
verreauxi, Cinnyricinclus 598, 612
verreauxi, Vidua 558
versicolor, Ergaticus 334, 347
versicolor, Lanio 771
versicolor, Meliphaga 118, 125, 751
versicolor, Passerina 223, 277, 402
versicolor, Quiscalus 371, 389, 424
versicolor, Strepera 654, 658, 661, 662, 672*
versteri, Melanocharis 768
verticalis, Cinnyris 83
verticalis, Creurgops 771
verticalis, Hemispingus 771
verticalis, Myioborus 334, 348
verticalis, Nectarinia 51, 52, 58, 83, 84
vespertinus, Coccothraustes 430, 431, 454, 486
Vestiaria coccinea 355, 357
vestiaria, Drepanis 357
vieina, Meliphaga 769
vicinior, Vireo 361, 365
vicinus, Passer 523, 533, 565
victoria, Cisticola 555
(als vene-
(als superci-
victoriae, Ptiloris 683, 691
vietoriae, Sitta 768
Vidua 489, 491, 518, 519, 525, 527, 528
— chalybeata amauropteryx 523, 525, 557
— — centralis 525, 527, 557
— — chalybeata 523, 524, 557
— — ultramarina 525, 357
— funerea 525, 529
— — funerea 525, 557
— — purpurascens 523, 525, 557
— fischeri 526, 557
— hypocherina 526, 557
— macroura 489, 491, 492*, 510, 523, 525,
526, 527, 528, 358
— orientalis interjecta 529, 558
— — obtusa 523, 525, 528, 529, 558
— — togoensis 529
— paradisaea 489, 491, 523, 526, 528, 529, 558
— prineipalis 558
— regia 489, 523
— — regia 526, 558
— serena 558
— verreauxi 556
— wilsoni 526, 557
Viduinae 487, 489, 517, 518, 522, 526, 52
Viduinen 518
vieilloti, Sphecotheres 608*, 623, 626, 629
vieilloti, Strepera 661
vieilloti, Tangara 280, 296, 298, 304*, 313, 317
vigorsi, Dendroica 341
vigorsii, Aethopyga 52, 53, 76, 95
vigorsi, Saltator 274
viguiri, Dacnis 773
villosa, Sitta 768
vinacea, Habia 287, 308
vinacea, Lagonosticta 487, 499
vinaceus, Carpodacus 774
vincens, Diecaeum 42, 43, 45
vincens, Euphonia 295, 315
violacea, Euphonia 278, 279, 232, 293, 294— 296,
315
violacea, Loxigilla 212, 261, 262, 272*
violacea, Loxipasser 262
violacea, Nectarinia 50, 51, 52, 70, 91
violaceicollis, Euphonia 3/4
violaceum, Dicaeum 47
violaceus, Corvus 696, 721, 752
violaceus, Cyanocorax 696, 705, 732
violaceus, Ptilonorhynchus 663, 664, 666, 667,
670
violaceus, Sturnus 615
virens, Contopus 328, 404
virens, Dendroica 322, 327, 342
virens, Icteria 322, 336, 351, 352*, 401, 404,
766
virens, Thraupis (recte episcopus) 396
virens, Viridonia 355 (einmal als Loxops), 356,
357
29, 556
virens, Zosterops 96*, 1/1
virenticeps, Atlapetes 218, 268
Vireo 205, 336, 359, 360, 362, 398, 436, 535
— altiloguus altiloquus 359, 362, 367
— — barbadensis 359, 362, 367
— — barbatulus 366
— atricapillus 360, 363
— bairdi 773
— bellii 404
— — arizonae 364
— — bellii 360, 364
— — medius 364
— — pusillus 360, 364
— brevipennis 360, 363, 402
— calidris 367
— caribaeus 773
— carmioli 361, 365
— crassirostris tortugae 360, 364
— flavifrons 359, 361, 366, 404
— flavoviridis 396, 401
— gilvus 359, 404
— — gilvus 367
— — swainsonü 367
— griseus 361, 404
— — bermudianus 364
— — griseus 360, 364
— — maynardi 364
— — micrus 364
— — noveboracensis 359, 360, 364
— gundlachi 360, 364
— huttoni cognatus 363
— — huttoni 360, 363
— — stephensi 363
— hypochryseus hypochryseus 361, 365
— latimeri 359, 361, 365
— magister caymanensis 362, 366
— modestus 352*, 361, 365
— nanus 361, 365
— nelsoni 773
— olivaceus 362, 403, 404
— — chivi 362, 366, 399
— — diversus 366
— — flavoviridis 359, 361, 366
— — griseobarbatus 361, 366
— — olivaceus 359, 361, 366
— — vividior 352*, 361, 366
— osburni 361, 365
— pallens 773
— philadelphius 359, 366
— solitarius alticola 365
— — cassini 361, 365
— — lucasanus 366
— — plumbeus 365
— — solitarius 359, 365
— virescens 366
— vieinior 361, 365
Vireolaniinae 359
Vireolanius 359
874
Vireolanius leucotis 773
— melitophrys 773
— pulchellus 773
Vireonidae 359, 393, 398, 401, 403, 773
Vireoninae 359
Vireos 352*, 359
Vireosylvia 362
— agilis 366
virescens, Meliphaga 118, 119, 124, 125, 151
virescens, Pseudoleistes 386, 392, 398, 422
virginiae, Vermivora 323, 339
virginianus, Cardinalis 271
viridicauda, Aethopyga 95
viridicollis, Tangara 772
viridieyana, Cyanolyca 695, 697, 703, 731
viridifacies, Erythrura 774
viridifuscus, Oriolus 775
viridipectus (statt lucidipectus), Nectarinia 69
viridis, Aeluroedes 669 *
viridis, Chlorophonia 316
viridis, Cyclarhis 352*, 359, 360, 363
viridis, Gymnomyza 770
viridis, Icteria 351
viridis, Leistes 421
viridis, Oriolus 627
viridis, Psarocolius 370, 371, 373, 405, 407,
416
viridis, Sphecotheres 629, 775
viridis, Tersina 279, 281, 302, 320
viridisplendens, Nectarinia 58, 84
viridissima, Tangara 298, 304*, 318
Viridonia parva 355, 357
— sagittirostris 773
— virens stejnegeri 355, 357
— — virens 355 (einmal als Loxops), 356, 357
viscivorus, Turdus 596, 604, 702, 716
vitellina, Dendroica 328, 343
vitellinus, Cacicus 375, 411
vitellinus, Ploceus 538, 542, 543, 545, 577
vitiensis, Aplonis 594, 606
vitriolina, Tangara 280 (auch als ruficapilla,
s. a. Berichtigungen), 298, 299, 318, 878
vivida, Sporophila 258
vividior, Vireo 352*, 361, 366
vividus, Cyanocorax 706, 733
vlasowae, Plectrophenax 188, 235
vociferus, Psilorhinus 707, 734
Volatinia 166
— jacarini jacarini 168, 206, 256
— — peruvianus 206, 256
— — splendens 168, 205, 256, 272*
vorhiesi, Pipilo 215, 265
Vosea whitemanensis 770
vulcani, Junco 192, 243
vulgaris, Icterus 415
vulgaris, Sturnus 387, 538, 555, 591, 592, 594,
596, 599, 600, 601, 608*, 616, 617, 724, 767
vulnerata, Myzomela 769
vulneratum, Diecaeum 768
vulpina, Cranioleuca 395
vulturinus, Corvus 762
Wachsschnäbel 487, 489
Wachtel 686
wagleri, Icterus 370, 381, 215, 416
wagleri, Psarocolius370, 371,374, 404, 407 —409,
411
wahnesi, Parotia 776
waldenii, Dierurus 632, 634. 640
Waldsänger 214, 321, 325, 329, 352*
wallacei, Semioptera 776
wallacei, Zosterops 100, 101, 106
walleri, Onychognathus 591, 595, 609
waltoni, Carpodacus 448, 478
Wanderelster 713
warreni, Coccothraustes 454, 486
warszewiczi, Dives 388, 123
watkinsi, Incaspiza 770
waynei, Dendroica 342
Weber 359, 517, 519, 521, 524, 527, 533, 5335,
542,552
Webervögel 3, 51, 496*, 517, 519, 521, 548
weigoldi, Emberiza 173, 227
weigoldi, Parus 19, 32*
Weißohrkatzenvogel 665
wellsi, Climacteris 37, 41
wellsi, Coereba 353
Wendehals 717
wetmorei, Buthraupis 772
Wetmorethraupis sterrhopteron 772
weynsi, Ploceus 775
whitakeri, Garrulus 708, 737
whiteheadi, Sitta 27, 30
whiteheadi, Urocissa 696, 710, 711, 741
whytei, Conopophila 115, 117, 120, 139, 159
whytei, Nectarinia 69, 90
whitemanensis, Vosea 770
whytii, Poospiza 208, 254
whytii, Serinus 440, 462
Widahvögel 517
Wiesenpieper 533, 547
wilkinsi, Nesospiza 770
williamsoni, Ploceus 582
wilsoni, Callaeas 645, 648
wilsoni, Hemignathus 356, 357
wilsoni, Serinus 439, 461
wilsoni, Vidua 526, 557
Wilsonia canadensis 322, 333, 347
— citrina 322, 329, 333, 347
— mitrata 347
— pusilla chryseola 333, 347, 352*
— — pileolata 333, 347
— — pusilla 322, 333, 347
witherbyi, Emberiza 185, 186, 234
Witwen 487, 489, 517, 524, 526, 527, 556
wladiwostokensis, Parus 21
wollweberi, Parus 7, 17
wood£ordi, Corvus 776
Woodt£ordia lacertosa 769
— superciliosa 99, 109
woodhousei, Parmoptila 490
woodhouseii, Aphelocoma 702, 731
woodi, Nectarinia 65, 87
woodwardi, Anthochaera 145, 160*, 164
wortheni, Spizella 197, 248
Würger 548, 598, 649, 709, 713
Würgerkrähen 654, 672*
Würgervireos 359
xanthocephala, Tangara 296, 297, 318
xanthocephalus, Xanthocephalus 382, 383, 391,
417
Xanthocephalus 370; — icterocephalus 417
— xanthocephalus 382, 383, 391, 417
xanthochlorus, Anthreptes 80
xanthochroa, Zosterops 107
zanthocollis, Petronia 496*, 520, 523, 535, 568
xanthogaster, Euphonia 772
xanthogastra, Carduelis 444, 466
xanthogastra, Tangara 772
xanthogenys, Parus 6—8, 22, 27, 29
xanthogramma, Melanodera 770
xantholemus, Icterus 774
xanthomelaena, Euplectes 588
Xanthomelana 553
xanthomelas, Euplectes 553, 587, 588
Xanthomyza 113
— phrygia 140, 160*, 161
xanthonotus, Oriolus 624, 627
Xanthophilus 518, 540, 541, 574—576
xanthophrys, Pseudonestor 773
xanthophthalmus, Agelaius 774
xanthophthalmus, Hemispingus 771
xanthoprymna, Munia 5/4
xanthops, Ploceus 519—521, 523, 540, 575,
603
Xanthopsar 391, 398
— flavus 381, 417
Xanthopterus 577
xanthopterus, Ploceus 497*,
542, 543, 551, 376
xanthopygium, Dicaeum 44, 46
xanthopygius, Heterospingus 772
xanthopygius, Prionochilus 43, 45
xanthopygus, Pardalotus £8
xanthorhynchus, Chalcites 53
Xanthornus 372, 373, 410, 413
— chrysopterus 412
xanthornus, Agelaius 396, 419
xanthornus, Ammodramus 196, 247
xanthornus, Icterus 413
xanthornus, Oriolus 608*, 623, 624, 625, 626,
629
xanthosterna, Petronia 568
519—521, 541,
875
Xanthotis 115, 128, 753
— lessoni 153
Xanthoura 695, 706, 707, 732 —734
— yncas 734
Xanthura 695
xantusi, Pyrgisoma 265
Xenodacnis 278
— parina 773
Xenoligea 321
— montana 336, 350
Xenospingus concolor 770
Xolmis 398
— irupero 399
yarrellii, Carduelis 774
yarrellii, Motacilla 531
yatii, Passer 523, 564
yemenensis, Acanthis 774
yenisseensis, Parus 24
yessoensis, Emberiza 178, 230
yncas, Cyanocorax 405, 408, 695, 698, 706, 707,
714, 133, 134
yorki, Chlamydera 668, 671, 672*
yorki, Philemon 134, 157
ypsiranganus, Emberizoides 770
yucatanensis, Icterus 379, 474
yucatanensis, Saltator 274
yucatanica, Cissilopha 675, 696, 697, 703, 704,
732
yucatanicus, Cardinalis 271
yunnanensis, Emberiza 173, 226
yunnanensis, Parus 6, 22
yunnanensis, Sitta 768
yuracares, Psarocolius 370, 371, 373, 375, 411
Zahnkatzenvogel 665
zaissanensis, Passer 534, 567
zambesiana, ÄAnthreptes 56
zambesianus, Änthreptes 56, 81
zambesiensis, Euplectes 588
Zamelodia 165, 220, 270, 271
zanda, Meliphaga 125, 751
zanzibaricus, Euplectes 554, 588
Zarhynchus 374, 411
zarudnyi, Passer 566
zarudnyi, Sitta 31
Zaunammer 176, 185
Zaunkönige 36, 321
Zavattariornis 695 — 697, 719
— stresemanni 715, 747
Zavattari-Vogel 719
zedlitzi, Lagonosticta 498
zedlitzi, Rhodopechys 447, 474
Zeisige 431, 441
zelandica, Aplonis 775
zeledoni, Chlorospingus 771
Zeledonia coronata 335, 350
zelotes, Certhia 36, £0
876
zena, Spindalis 280, 281, 289, 290, 311, 312
zenobia, Nectarinia 87
zetlandicus, Sturnus 600, 616
zeylonica, Nectarinia 61, 85
zeylonicum, Dicaeum 43, 45
zeylonus, Telophorus 450, 598 +
ziaratensis, Parus 21
Zistensänger 5
Zonaeginthus 487, 505, 506
Zonotrichia 165, 166, 188—190, 191, 194, 195,
214, 398, 399, 403, 521
— albicollis 191, 223, 242
— atricapilla 191, 242
— capensis 190, 199, 202, 213, 216, 394, 396,
398, 399
— — antofagastae 191, 240
— — argentina 190, 240
— — australis 190, 240
— — capensis 240
— — chilensis 190, 191, 240
— — costaricensis 168, 190, 224*, 239, 240
— — hypoleuca 190, 240
— — insularis 190, 240
— — matutina 190, 240
— — peruviensis 168, 191, 241
— — sanborni 190, 191, 240
— — septentrionalis 190, 239
— — substriata (recte subtorquata) 190, 878
— — subtorquata 190 (als substriata), 240
— — venezuelae 167, 190, 240
— coronata 242
— georgiana 188, 189
— — erierypta 239
— — georgiana 168, 239
— jliaca 223
— — fuliginosa 188, 236
— — jliaca 188, 236
— — megarhyncha 188, 237
— — monoensis 188, 224*, 237
— — schistacea 188, 236
— — stephensi 188, 237
— — unalaschcensis 188, 236
— leucophrys 191, 194, 197, 214
— — gambelii 241
— — leucophrys 241
— — nuttalli 191, 241
— — oriantha 241
— — pugetensis 241
— Jincolnii 189
— — alticola 239
— — gracilis 239
— — lincolnii 239
— melodia 188, 189, 190, 195, 197, 214, 237
bis 239, 402—404
— — atlantica 237
— — clementae 189
— — cleonensis 189
— — cooperi 239
Zonotrichia melodia euphonia 168, 189, 237
— — fallax 237
— — fisherella 238
— — gouldii 189
— — graminea 189
— — heermani 238
— — insignis 238
— — juddi 167, 237
— — melodia 238
— — merrilli 238
— — montana 237
— — morphna 238
— — pusillula 238
— — rivularis 239
— — rufina 238
— — saltoni 238
— — samuelis 238
— — sanaka 238
— palustris 239
— querula 191, 241
Zoothera naevia 598
Zosteropidae 99, 102, 769
Zosterops 99, 112
— abyssinica abyssinica 109
— — arabs 110
— albogularis 99, 101, 102, 109
— anomala 769
— atricapilla 779
— atriceps 769
— atrifrons atrifrons 106
— — hypoxantha 99, 100, 106
— aureiventris mexoxantha 7/04
— borbonica mauritiana 1/11
— buruensis 769
— ceylonensis 100, 105
— chloris 99
— — albiventris 106
— — intermedia 99, 106
— — maxi 106
— chlorophaea 112
— cinerea ponapensis 99, 109
— consobrinorum 769
— conspicillata 101
— — conspicillata 100, 101, 105
— — owstoni 100, 105
— — rotensis 105
— — saypani 105
— — semperi 105
— — takatsukasai 105
— erythropleura 100, 103
— everetti basilanica 105
— — mandibularis 99, 105
— explorator 99, 107
— ficedulina 769
— flava 99, 100, 101, 106
— flavifrons 99
— — efatensis 99, 107
— — flavifrons 107
Zonotrichia flavifrons perplexa 100, 107
— fusecicapilla 769
— grayi 769
— griseotincta 101
— — aignani 107
— — griseotineta 107
— griseovirescens 99, 111
— inornata 769
— japonica 99, 100
— — alani 103
— — batanis (errore sub palpebrosa) 103
— — daitoensis 103
— — japonica 99, 100, 101, 103
— — loochooensis 103
— — meyeni 103
— — simplex 100, 103, (als Z. simplex peguen-
sis) 104
— — stejnegeri 99, 103
— — taivanus 103
— kuehni 769
— lateralis familiaris 108
— — flaviceps 101, 108
— — gouldi 100, 107
— — griseonota 108
— — halmaturina 100 (als halmaturinae), 108
— — lateralis 100, 101, 102, 108
— — ramsayi 101, 108
— — tephropleura 99, 101, 102, 108
— — vatensis 108
— — vegeta 108
— lutea balstoni 101, 107
— — lutea 99, 101, 107
— Jluteirostris 769
— madagascariensis 211
— maderaspatana 99
— — aldabrensis /11
— — anjuanensis 112
— — maderaspatana 111
— mayottensis mayottensis 102, 112
— metcalfii 769
— minuta 769
— modesta 779
— montana montana 99, 100, 101, 106
— — pectoralis 99, 105
— mouroniensis /12
— murphyi 769
— mysorensis 769
— natalis 100, 107 2
— nigrorum 769
— novaeguineae 106
— — aruensis 106
— — crissalis 707
— olivacea chloronota 112
— — chlorophaea 112
Zonotrichia olivacea olivacea 7/2
— pallida 110
— — annulosa //1
— — atmorü 111
— — caniviridis /11
— — capensis 100, 711
— — pallida 111
— — sundevalli 711
— — virens 96*, 111
— palpebrosa 99, 100, 104
— — auriventer 99, 104
— — batanis (recte sub japonica) 103
— — buxtoni 104
— — cacharensis 104
— — egregia 100, 104
— — elwesi 104
— gallio 104
— melanura: 104
— — mesoxantha 104
— — nicobarica 104
— — nilgiriensis 104
— — oceidentis 104
— — palpebrosa 99, 100, 104
— — siamensis 96*, 99, 104
— rendovae 769
— rennelliana 769
— salvadorii 769
— samoensis 769
— sanctaecrucis 769
— semperi 105
— senegalensis anderssoni 99, 100, 110
— — eurycricotus 100, 210
— — flavilateralis 210
— — kikuyuensis 110
— — niassae 99, 110
— — poliogastra 110
— — reichenowi 2/10
— — seotti 210
— — senegalensis /10
— — stierlingi 100, 710
— — stuhlmanni 110
— strenua 99, 101, 102, 108
— stresemanni 769
— tenuirostris 99, 102, 108
— ugiensis 769
— uropygialis 769
— vaughani 112
— vellalavella 769
— wallacei 100, 101, 106
— xanthochroa 107
Zuckervögel 278, 321
zugmeyeri, Corvus 719, 736*, 751
zuluensis, Anthreptes 56, 82
Zwergammer 180
877
Setzfehler und Berichtigungen
Seite 3, 8. Zeile von unten: statt „1972°: 1963
Seite 4, 18. Zeile von unten: statt „„1937°: 1927
Seite 5, 12. Zeile: statt ‚„„BELoD“: BoLOD, ebenso S. 6, 12. Zeile, S. 26, 8. Zeile, und S. 167, 22. Zeile
Seite 5, 22. Zeile: statt „„1949°: 1948 (auch sonst ist PRIEsT 1949 in 1948 zu verbessern)
Seite 7, 30. Zeile: statt ‚1,39: 1,37
Seite 16 in Mittelspalte der Liste ‚‚wie cinctus‘‘ gehört zur Unterart Parus cinctus lapponicus, nicht
zu P. cinctus cinctus
Seite 19, 3. u. 2. Zeile von unten: statt ‚19,2: 19,1; statt „14,2“: 14,4; nach ‚‚315“ weiter zi-
tieren: BENSON & Pırman 1966, S. 31
Seite 24, rechte Spalte nach 14. Zeile bei Parus inornatus transpositus hinzufügen: bei Bent fälsch-
lich murinus (Ridgway). Diesen Zusatz in der nächsten Zeile streichen
Seite 42, 13. Zeile von unten: statt „81, S. 135, 1966‘: 135, S. 210, 1967: statt „‚21°: 25
Seite 50, 2. u. 5. Textzeile: statt ‚‚1912°: 1910
Seite 60, 16. Zeile von unten: statt ‚‚Ibis 1940, S. 362°: Ibis 1940, S. 36
Seite 82, rechte Spalte 6. Zeile statt „‚capensis‘‘: collaris
Seite 91, 9. Zeile von unten: statt „Ibis 1940, S. 213°: Ibis 1940, S. 33
Seite 107, 8. Zeile: statt ‚1960: 1950
Seite 121, 13. Zeile: statt ‚„Emu 12°: Emu 11
Seite 147, 7. Zeile: statt ‚‚‚liophorum‘‘ : iliolophum; 7. Zeile von unten: statt „‚S. 34°: S. 14
Seite 165, 16. u. 22. Textzeile: statt „Myiospiza‘‘: Myospiza bzw. statt „‚Sitagra“ : Sicalis
Seite 171, 2. Zeile von unten: statt ‚‚16, S. 82, 1940‘: 16, S. 182, 1940
Seite 182, 2. Zeile: statt „BAPANTSCHEJEW“: BARANTSCHEJEW
Seite 188, 24. Zeile: statt „‚Auk 6, S. 10 f., 1889: Auk 6, S. 109, 1889
Seite 190, 17. Zeile von oben und 5. von unten: statt „‚substriata““: subtorguata
Seite 224, nach „‚Fig. 5° bzw. ‚Fig. 17‘ einfügen: 0,85 bzw. 0,87 mal nat. Gr.
Seite 233, 2. Zeile von unten: statt „KAnIMmoxow“: KAPITONOW
Seite 250, 8. Zeile: statt „„Aimophila strigata strigata“‘: Aimophila strigiceps strigiceps
Seite 269, 17. Zeile von unten: nach ‚‚REISER 1903“ einfügen: leg., s. REISER 1924
Seite 279, 13. Zeile von unten: statt „Thraupis“: Euphonia
Seite 280, 1. Zeile: statt ‚‚nigrocincta (diese braun gezeichnet)‘: nigroviridis und vitriolina (diese
beiden braun gezeichnet)
21. Zeile: statt „„Tangara boliviana, T.“: Thraupis sayaca obscura
26. Zeile: dasselbe, ferner statt ‚‚chrysophrys‘‘: guttata bogotensis
31. Zeile: statt „‚ruficapilla“ : vitriolina
35. Zeile: statt „‚gyruloides‘: gyrola bangsi
Seite 298, 21. Zeile: statt ‚„‚„1964°: 1954 h
Seite 307, 14. Zeile: statt „‚melanopogon“ : melanopygius
Seite 319, 5. Zeile: statt ‚‚franscicae‘‘: franciscae
Seite 321, letzte Zeile: statt ‚„„1972°: 1957
Seite 345, 14. Zeile von unten: statt „Hana 1925: Hanna 1924
Seite 346, 6. Zeile von unten: statt ‚6, S. 223—232, 1877“: 5, S. 223—232, 1880
Seite 355, 21. Zeile von unten: statt ‚„‚Loxops‘‘: Viridonia
Seite 360, 5. u. 4. Zeile von unten: statt „‚Wilson Bull.‘‘: Condor
Seite 364, 9. Zeile: statt „4“: 25
Seite 371, 18. Zeile: von unten: statt „Gymnomystax“‘: Psarocolius
Seite 379, 21. u. 22. Zeile: statt ‚„SCLATER & SaLvIN“: SALVIN & GODMAN
879
Seite 393, 7. Zeile von unten: statt „351 — 364°: 51—64
Seite 402, 13. Zeile von unten: statt ‚‚32°“: 81
Seite 405, 5. Zeile: statt ‚„‚„Psarocolius‘: Cacicus
Seite 416, 5. Zeile von unten: statt „35°: 5
Seite 417, Fußnote: statt ‚„MannıG“: MAnNISG; statt „„DICKEY“': STICKLEY
Seite 424, Fußnote: statt ‚„MannıG“: MANNINnG
Seite 428, 3. u. 2. Zeile von unten: statt ‚‚86, S. 529 f£., 1938“: 81, S. 592 £., 1923
Seite 443, 6. Zeile von unten: statt ‚„‚,1898°°: 1888
Seite 458; 15. Zeile: statt ‚„umbrinus‘“: umbrosus
Seite 469, 15. u. 14. Zeile von unten: statt ‚„MALJSCHEWSKIJ“ und ‚‚S. 63°: MALYSCHEWSKIJ bzw.
S. 23
Seite 473, 3. Zeile: statt: „Kantmonow“: KAPITONow
Seite 480, 8. u. 9. Zeile: statt „MALJTSCHEWSKIJ“ und „22°: MALYSCHEWSKIJ bzw. 23
Seite 483, 4. Zeile: statt ‚‚75, S. 36, 1927°: 77, S. 36, 1929
Seite 485, 4. Zeile: statt ‚„„1938°: 1928
Seite 511, 5. Zeile: statt ‚11°: 10
Seite 517, 26. Zeile: statt „Genf“: Gent
Seite 564, Fußnote: statt „Yom-Tor‘: Yom-Tov; statt „334°“: 341
Seite 566, Fußnote u. 12. Zeile von unten in der linken Spalte; 8. von unten in der rechten Spalte:
statt „„SSOPYJEW‘': SSOPJEW oder SOPJEW
Seite 606, rechte Spalte 5. Zeile: statt ‚„‚Ono-ilan““: Ono-ilau
Seite 628, 14. Zeile: statt „26,7: 26,1
20. Zeile: statt „Bates 1926°: BAKER 1926
Seite 663, 2. Zeile: statt „173°: 172
Seite 670, letzte Spalte 6. Zeile von unten: statt „Bunga-Gebirge‘: Bunya-Gebirge
Seite 710, 25. Zeile: statt „W. Humr‘“: ed. HumE
un Din
ir” ER N p# .
>», 4 za & Ta neh: 7:
8 7 7 fi w i FRIERa.; - DR a
arten ı Fr mw ‘ R
f ua ar y-
r - = Aa, 1" EREH, DEE.
2 5, zart a 200 ar Naaf
ie 4, N rg Ya U Maja:s Jam Br Hi
S
RK (443 » a W
hy i 0 .. area
s ir... ti
® = , ar Zu
4 r ö
r rn. - a
vr PPEIPr EZ... 2 7
123
>
}
j s
‘
”
/
: .
2
I
iR
1 .
u | h
I .,% . 22
MAX SCHÖNWETTER
L
_ HANDBUCH DER O00LOGIE
HERAUSGEGEBEN UND BR VON
Prof. Dr. WILHELM MEISE
Zoologisches Institut und Zoologisches Museum Hamburg
Lieferung 41
un u ar TE Er FE RE Ay
AKADEMIE-VERLAG - BERLIN
1985
es
ARTE ;
E
e
Pr
#
\
>
—
NK
D
MB Marhematischer, Teil en ee
Berechnungen für Zwecke der Oologie . . . 2... u. Zr . Ri
Vorwort .... REN RE RE a
ie Fi veireichui: da Mathematischen Teils B im Band w ER LER a I
“"Tabellenverzeichnis (7.=. 1... SE ENN e ee n
Figurenverzeichnis . ER ET AUT PER en EZ
- Einleitung ELBE va Nee a m N RL LA Mel, DB ,= He EB m La Ste A A ER
1. Die Eigestalb a vn a MEN Se RR re ee
2: Das Eivblamen (Y) 2 2 aRea ea Le AR) BE
3. Die absolute und die relative Größe der Vogeleier een, Fee
l
Erschienen i im Akademie-Verlag - Berlin, DDR - 1086 Berlin, Leipziger
‘© Akademie-Verlag - Berlin 1985 BEN.
Lizenznummer: 202 . 100748485 | —_ at
‘ Printed in the German Democratic Republie ’
Gesamtherstellung: VEB Druckhaus „Maxim Gorki‘“, 7400 Alte
DE Y Ai LSV 1365 i N
Bestellnummer: 763 244 3 (3037/41) .
00900
B. Mathematischer Teil
£ i EN +
Berechnungen für Zwecke der Oologie
!
#
%
De ” "Wr .
PA? # “ #
FE BE
Vorwort
Dieser zweite Hauptteil des Handbuchs der Oologie von M. SCHÖNWETTER, ein Zwerg
gegenüber dem riesigen ersten Teil, wurde vom Herausgeber in der Einleitung zum
Gesamtwerk (1960, S. X) angekündigt. Dort (S. XI— XIII) sind die meisten quanti-
tativen Begritfe kurz definiert, um das Verständnis des Teiles A (Kritisch vergleichende
Beschreibung der Vogeleier) zu erleichtern.
Der folgende Teil B enthält die Erklärung für SCHÖNWETTERS Vorgehen bei der
rechnerischen Auswertung seiner Befunde; er bietet praktische Hilfe in Beispielen und
in umfangreichen Tabellen und ist für jeden oologisch interessierten Benutzer der drei
ersten Bände des Handbuchs der Oologie unentbehrlich. Daher soll er fast unverändert
veröffentlicht werden; denn weder eine Heranziehung der neueren Arbeiten auf diesem
Gebiet noch ein weiterer Einstieg in die Fundgrube früherer mathematischer Versuche
am Vogelei hätten das Vorgehen SCHÖNWETTERS besser verständlich gemacht. Es muß
betont werden, daß SCHÖNWETTER nach einigen damals schon ‚vergessenen‘ Vor-
gängern bereits 1923 bei seinen Berechnungen an den Vogeleiern das Schalengewicht
berücksichtigt hat.
In diesem Teil B, mit dem Band IV des Gesamtwerkes beginnt, hat der Herausgeber
außer wenigen stilistischen Änderungen einige Umstellungen vornehmen und die
Formeln mit Nummern herausstellen, außerdem viele wissenschaftliche Namen ent-
sprechend der Hand-List von PETERS ändern bzw. hinzufügen und ein Literaturver-
zeichnis nach den Andeutungen von SCHÖNWETTER nebst einigen Zusätzen dazu an-
fertigen müssen, ferner nach einer Zusammenfassung noch Ergänzungen aus der Litera-
tur seit etwa 1940 sowie ein Schriftenverzeichnis dazu und am Schluß ein Register, frei-
lich nur zum Teil B, für Personennamen, Stichworte und Tiernamen verfaßt.
Im Manuskript liegt noch ein dritter Teil des Handbuchs der Oologie vor, den SCHÖöN-
WETTER als den ersten ansah; es ist der Allgemeine Teil. Seine Veröffentlichung war
natürlich auch geplant, ist aber nicht denkbar ohne eine völlige Neufassung großer
Teile. Er ist darum nicht in die Abmachungen mit dem Akademie-Verlag, Berlin,
einbezogen worden, zumal ich mich schon 1951, als ich die Herausgabe des ganzen
Werkes und dieses selbst vom Autor übernahm, solch großer Verpflichtung entziehen
mußte und ursprünglich Herr Dr. WoLrcang MaratscH f, Bautzen, nach einem
Wunsche des Verfassers diesen Teil übernehmen wollte. Ich hoffe, der letzte Band wird
trotzdem bald überarbeitet werden und erscheinen.
Der Allgemeine Teil enthielt Abschnitte, ohne deren Veröffentlichung der jetzt
folgende Teil B nicht recht verständlich wäre. So mußte ich ihm einige Seiten entnehmen;
sie handeln von der mathematischen Erfassung der Eigestalt (etwa 10 MS-Seiten) und
von der Größe der Eier, besonders vom Relativen Eigewicht (etwa 30 MS-Seiten).
Hamburg, im Februar 1982 Wilhelm Meise
1i*
Inhaltsverzeichnis des Mathematischen Teils B im Band IV
BEINE Hu Trees ee ee a Eat
IIICHTEITETTR N ni en N ee TER NT
nn LE er 1 ee a en Dee a Eee
a) Länge A, Breite Bund Achsenverhältnisk . -. -. -. :....... Le SE
HERBugisehe Ingestalten mn den Familien !. .\. 2.2 2 2... „2 .a. a2 0%
e) Kritik an der Einteilung der Eigestalten bei Des Murs a KuTTeR
HE Nermale Hisestalten.. - - .. 2... -..3.. 5. RS ER ee |
e) Abweichende Eigestalt bei nahen Verwandten -. - .-. --..-. - 2 2. 2 2 2...
f) Abnormitäten der Eisestalt . ...... EN N a
BERISEmermes u. As a ee: SUP ER ER N 32
BR Abnoem Klemme Buerım Gelese 2.2 2 2 0 2 a een en ı en
BEE tbuerımiorafse Bier sm bGeleme 0 u a En N ee
IV) Vogeleier von asymmetrischer Gestalt oder mit einer Einschnürung am san
Einde sowie Monstrositäten -. - - - 2... Er NE EN KR :
&g) Zahlenmäßige Behandlung der verschiedenen Birestalten. SDR: EEE BENIRE
BiRAllSememesiS ee ee Sr EEE FEN
II) Die Gestaltskriterienkunde.. .....
HIT) Die Reduktionskriterien 2 und c als essen ingen EL RER EEE
IV) Ermittlung der DR te Me a ee
=. Das Irene a EEE EEE es.
ee absolute und die relatsave Große der Vogeleier - _. - .-,-.- 0.02.00. 2 Am.
a) Ermittlung der Eigröße ohne Berechnung, insbesondere mittels der Wassermethode .
b) Berechnung des Eigewichts als des besten Vergleichswertes für die Eigröße. . . . .
ce) See der Eidimensionen Arund B:aus.dem Bigewicht G | .- 7... = - u 2.0
BR FINE Bigewichu (GN 200.0. ee ee Nana
e) Variation m normalen Eigrößen und -gewichte innerhalb der a
f) Schalengewicht (g) der Vogeleier
BASE N re By ST ee
TI) Falsche Gründe gegen das Wiegen. . -.-. ........
II) Berichtigung falscher Gewichtsangaben . . . - .».-. . 2.2. 2 2.2... 1
BURN arsataensder Schnlengewichte® sn. >. 2°... . 23 PL en mel ur
V) Berechnung der Schalengewichte (g) und der Schalenvolumina (V,)
VI) Über die Nützlichkeit der Schalengewichtsangaben . ......
Mathematischer Teil /
g) Relatives Schalengewicht (Re)”. - 27.2.2: 2-2. WS ee a 44
I) Allgemeines ne, eye Te ee ae ah bar Pe Aa 2 Kae Be . 44
II) Abhängigkeit der Rg von der Eigröße .. ..». ...... a 45
III) Beispiele für die Unregelmäßigkeit der.Bg) .. . N. ee 2 a 46
IV) Beispiele für durchschnittlich fast gleiche Rg trotz ee Eigröße ee
V) Beispiele für kleinste Rg bei größtem Eiin der Familie... . ..». 2... 49
VI) Beispiele für die Variation der Rg innerhalb der Gattung. . ». » » » 2.2... 50
VII) Variation der Rg innerhalb der Art .. . . . . Sna na ne ee 51
VIII) Relatives Schalengewicht Rg bei den Brutparasiten . .. » 2.2.2... .. 52
IX) Rg bei Höhlen- und Offenbrütern . . . ....... er 2 a 54
X) Bg bei Nestflüchtern und. Nesthockern ....: ..- »1... 2. Zuueue »i, 2 Dee 55
h) Beziehungen zwischen Eigewicht und Anzahl der Eier im Gelege sowie zwischen Eigröße -
und Eidimensionen . . .... Me e 57
i) -Eigewicht und, Weibehengewicht . ..=. . 0... 2202 n .l2 . nun 2 22
I) Eigewicht und Weibchengröße . ..... 27. su... 2 1 2.2 ee 59
II) Weibchengewicht . . . well ee 59
III) Absolutes Eigewicht und Wären Mr ie 2.2 2, De 60
IV) Belatives Eigewicht (RG) . . ..... 22.2.2 an Je in 68
V) Relatives Eigewicht im System der Vögel mit Berücksichtigung von Nestflüchter-
tum und VWerdecktbrüten . _.. ..+.- u. = 2 „a0 .= = 2 =02. 2 Se 68
VI) Schwankung der RG einiger Familien, en dem Familiendurchschnitt geordnet 69
VII) Variation der RG innerhalb einiger Familien ..:%.. -ı =... „7.0.02 Sr 70
VIII) Durchschnittliches Weibchengewicht und Schw ankung der RG im Gesamtsystem
der’ Vögel, 0, 2.0.2 2 en ee ee 71
IX) Vermutete Faktoren Er ie Schwankung der RG (HEINROTHs, HUXLEYS und
Anderer Vorstellungen) °': -- 2... 4 min cn na 2 Zaren 74
X) Beziehung zwischen Relativen eralen (RG) und Verhältnissen am Vogel-
malt urn - De u In ia ha Fi ee ehe) ee a
K)' Relatiyes.Gelegegewicht 2.1. 7. u a a a - 75
I) Einfluß von Gefangenschaft nl Dar auf die Eigrößen ... . „WEB 77
„Die Schalendicke (d) der Vogeleier : .» -. ... 22 w./4.'2 . „KA HEREE EEE 79
ER RE ee EN A N... . 79
INeberechuang 2. U. 220% 00 01.000, SE a a u 2 2 ne 80
c) Variation der Schalendieken am selben 1 io - 81
d) Variation bei normalen Eiern derselben Art und innerhalb der Familie... ..... 86
e) Variation von d und anderen oologischen Zahlenwerten im Gelege (absolute Werte) . . 88
1) -A,variierbistärker alsıB ... vo er ee 93
II) Das Volumen variiert stärker als jede der Eiachsen . . ..... 222 .2.. 94
III) Das Schalengewicht variiert stärker als die Eiachsen. . . . . . 2222... .94
IV) Das Achsenverhältnis k schwankt nur wie die Längsachse . ......... 94
f) Korrelation zwischen Schalendicke und anderen oologischen Schalenwerten. . .... . 94
g) Schalendicke (d) bei Zwerg- und Rieseneien . . ....:. 2. 2 22 2 an cd. 95
» Die-Reyschen Quotienten qund @ ...: .. . 2 2. N a ee 101
» Bie.OberBläche{®) dessen; IE 2 a IE ee Me 108
a) Empirische Ermittlung . .. ....... 0 108
b) Analytische Bereehnung . 12. N. ne N 108
e) Berechnung der Ei-Oberfläche nach Eon, HELLEDAY & ANDERSSON . . ... .. . 110
d) Ungefährer Näherungswert für die Oberfläche . ... 2... 222 22 20m 2. 111
. Der große und der kleine Eiumfang (Uundu) . .....2.... a . - 111
. Dasispezifische Gewicht (y) der Eischale .. „I. 22 2 u. 2.0.2. DE 116
a) Berechnung des spezifischen Gewichts. =... Alan. kueche te 116
I) Berechnung nach größeren Scherben ®. 2)... U & „ wir. 1.12 „ET yo 116
TB TE
Berechnungen für Zwecke der Oologie
II) Berechnung nach zahlreichen kleineren Scherben . ... 2... .....
TIT) Berechnung durch Bewertung der Schalenhaut . .. . ......2..
BrkeiederVoseleischaler > I, 3 u N ME A er. REN ae
Ko)
Bebecechnungs) sn aan une el eg N ln RR
10. Die Eikurven SzZIELASKos und seine Bildungsgesetze der Eigestalt . . . . . . .
a) Normale, abnorme und monströse Eigestalten nach SZIELASKO . . . .» .....
b) Zeichnung von Eikurven (Längsschnitten) nach SZIELASKos Formentafeln . .
mes Diiescduechschnittliche“Eigestalt („;Normalei‘‘) „a. 2.2 LEN
122 Merkwurdige Vereinfachung oologiseher Bormeln %. 7... 0. 2... m.®
BRSINDENISBUNDEN ea ln NIE ne
Bisepblesanzıngenvaus’neuer. uterabun. aus 4 esa. rare bee ee
zu 18 I) Zahlenmäßige Behandlung der verschiedenen Eigestalten. Allgemeines
zu 15 II) Gestaltsfaktor k bei nahen Verwandten . .
zu 2) Weitere Formeln für das Eivolumen
zu 3a) Die Wassermethode der Eigewichtsfeststellung .
zu 3b) Gewichtsformel . 2 3
zu 3c) Variation der normalen Eigrößen und era kamen der Art,
zu 3g II) Abhängigkeit der Rg von der Eigröße . ee
ZEN) relatives Eigewicht (RG). . : . -. ......
zu 3iIX)Zur Abhängiskeit der Relativen Bigraße yon Umweltfaktoren K$
Zvelaiives;Gelegegewicht: ul an N. RN a
zu 4f) Korrelation zwischen Schalendicke a sachmen en imlenmerien -
zu 40) Umweltschäden führen auch zu Schalenverdünnungen .
zu 6b) Analytische Berechnung der Eioberfläche .
zu 8a) Spezifisches Gewicht (y) der Eischale ER ar
zu 9a und b) Spezifisches Gewicht des Vogeleies. . . . . .
zu 9c) Einfluß von Verdunstung und Bebrütung auf G und EB
zu 94) Wann schwimmt ein Eiim Wasser? . . . 2.2.2...
iaerdeSchiattengdesyHauptieilsen nn a ns N RE as
Eebsuldtumgder Eirsanzungenvg a. le ae ana ine ce ehren ee en ger
EEE ISDUETEEBISLSTH Pas le han NE EN Na Be RS ee ee ae Snai reh Me
Eiiehworbregisten YA en un gehen era een oe re a ee re
Register der wissenschaftlichen und der deutschen Tiernamen . .........
Berehlennd"Berichtieungen nn en ee ee ee gerne
. Das spezifische Gewicht (T) des Vogeleies. -. . . . »...... EAN SSR.
eb 2 el Meine Ka
D)eiEimermeuesKormelsturly ze a Su Er TE
c) Einfluß von Verdunstung und Bebrütung auf GundT. . ... 2... 22.2...
d) Wann schwimmt das Ei auf dem Wasser? . . ». . . 22 2 2 2 22 22202.
e) Wieviel Prozent (p) seines Gewichts muß ein Ei verloren haben, wenn esim Wasser auf-
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Tab.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Pwwr
an Qu
Tabellenverzeiehnis
. Häufigkeit der verschiedenen Werte der Gestaltskriterienkunde. ........ 21
. Beispiele für die Werte der Gestaltskriterien k und e in paläarktischen Familien. . . 22
. Eigewichtsverlust infolge Wachsens der Luftkammer im Ei. ... ... 2.2... 30
Gewichtsverlust Ag infolge eines Schalendefektsf . . -. . 2. 2 2 2 un on 2 uns 38
. Bohrlocheinfluß auf das Schalengewicht ... ... „% la mm. Ai 39
. Relative Eigewichte und zugehörige Wabern ichte mit Berücksichtigung von
Nestflüchtertum, Verdecktbrüten und Gelegegrößen . .... . 2... N. Prise 63
. Gewicht von Vogel und Ei innerhalb der Vogelgewichtsgruppen . . . . 2.2... 73
. Der Dickenfaktor m . . » un Mara wi Tr A ee 82
. Beispiele zur Variation der oologischen Zahleriwerie im Gelege (absolute Werte) . ..89
. Variation oologischer Zahlenwerte in je einem Gelege von 67 Arten (prozentuale Werte) 92
. Vergleichende Übersicht oologischer Werte bei ungefähr gleichschweren und einigen
anderen Vogeln 7... 9 } TEN SAN Fre 5.3, - 96
. Mittlere Werte von REys on, a 0 - 102
. ReysQuotienten bei besonders großen Eiern, a = Kuckuckseier gehalten werden
können a a u ee ner m en = Mn ee 108
. Berechnung der Oberfläche des Be O.:= BRY 2 Pe 109
. Gestaltsfaktor c für die Oberflächenberechnung . . - . . -. „1... u 02 Er Eee 110
. Oberfläche (O,,) eiförmiger Körper, deren nn 200 mm lang ist ... . . 112
. Tafel der el zur Berechnung der Eioberfläche in Tab. 16 . ..... 2... 113
. Werte der Kappa (x) zur Berechnung des Umfangs (U) der Ellipse ........115
. kappa-(x +.)Methode(hier 5 5; .) zur Berechnung des Umfangs der Ellipse ...... 115
. Spezifische Gewichte der Eischalen . . . ........ ee 0 118
. Berechnung spezifischer Gewichte der Eier... . .2.8. . 21.2 Weeze 121
22. Einfluß der Bebrütung auf das Eigewicht und auf das ee Gewickk des Eies . 126
wur
Sog > Eu ==
Figurenverzeichnis
„Normale Eigestalten io. . 4...) 2 2.0470. Kos a KL: Fe 14
. Gewichtsverhältnisse der Bestandieile, von ein-, zwei- und dreidottrigen Hühnereiern . 14
. Verhältnis zwischen Eigewicht und en icht bei den Anseres und Colymbiformes
(heute Podicipediformes) ... in nm a RE Wi 60
. Eigewicht und Vogelgewicht vieler Ale in cher Darstellung. . „Jura 61
. Aptenodytes patagonica. Zusammengesetzte Eikurve . . . . . : 2. 2 2 2 m nenn 132
Das ‚‚Normalei‘: Eigestalt vom Durchschnittwohl aller Yopekfr u E 136
Einleitung
Die folgenden Ausführungen betreffen das Ei an sich, ohne Beziehung zum Vogel,
und zielen darauf ab, durch möglichst einfache Berechnungen aus den Achsenmaßen
(A und B) nebst den Gewichten (g) der Eischalen in Sammlungen andere Größen
und Beziehungen abzuleiten, die zur vollständigen Beschreibung der Eier und bei
der Verwertung dieser für allerlei Fragen gebraucht werden, auch für solche, die erst
durch unsere Berechnungen auftauchen. In Betracht kommen folgende Begriffe,
über die in der Literatur zahlenmäßig bisher nur wenig, für die meisten Vogelarten
überhaupt fast noch nichts bekannt wurde, ein Mangel, dem dieses Buch abhelfen
‚möchte. Es handelt sich um 1) die Eigestalt; 2) das Eivolumen; 3) die absolute und
die relative Größe der Eier: (das Eigewicht); 4) die Schalendicke; 5) die Reyschen
Quotienten; 6) die Eioberfläche; 7) die beiden Umfänge des Eies; 8) das spezifische
Gewicht (spez. Gew.) der Eischale; 9) das spezifische Gewicht des Eies und 10) die
Konstruktion der Eikurven nach SZIELASKO, wobei zum Abschluß das Normalei in
der durchschnittlichen Eifigur gezeigt wird. — Die vollständige Berechnung eines
Vogeleies findet sich im Systematischen Teil, Abschnitt „Haushuhneier‘““ (Band I,
Ss. 263— 264).
Da es sich bei der Eigestalt um eine Kurve höherer Ordnung handelt, erweist sich
eine rein mathematische Berechnung der gesuchten Größen als praktisch unmöglich.
Wir helfen uns deshalb mit Näherungen und fassen das Ei als ein Retatiensellipsoid
auf, das durch variable, empirisch ermittelte Faktoren (» und c) auf die tatsächliche
Eigestalt reduziert wird (ihre Berechnung siehe S. 24—27). Da diese Hilfsgrößen
aber gewöhnlich durch Schätzung ermittelt werden, wenngleich in recht engen Grenzen,
darf man nicht höchste Genauigkeiten erwarten, muß sich vielmehr mit guten Nähe-
rungswerten begnügen, ausreichend wohl für alle praktischen Zwecke, bei denen eine
Unsicherheit bis zu 3 oder 5%, nicht schadet. Der unvermeidliche Fehler bleibt bei
unseren Formeln sehr oft erheblich geringer, obwohl bei ihrer numerischen Auswer-
tung für die 9827 Arten und Rassen unserer (d.h. der von SCHÖNWETTER geschriebe-
nen, Hrsg.) Listen einige Schematisierung nötig war, um die große Rechenarbeit zu
bewältigen.
Die Genauigkeit anderer Verfahren zum gleichen Zweck wird leicht überschätzt.
Zum Beispiel nimmt BeretoLp (1929, S. 471) bei seiner der unsrigen ähnlichen
Berechnung von Eigewiehten den verbleibenden Fehler nur zu 5°, an. Dieser wird
jedoch bei seinen 41 Ergebnissen (1929, S. 472) 16mal überschritten. In 7 Fällen sind
es 13—15°/,, von mir aus seinen eigenen Ängaben berechnet. Bergtolds Fermel
11 3
>31 (LB?)-S=W, mit unseren Buchstaben: - AB 6 (1)
angewandt auf alle möglichen Arten, berücksichtigt nicht die verschiedenen Gestalten
der Eier, gilt daher streng nur für mathematische Ellipsoide. Bei der Auswertung
10 Mathematischer Teil
nimmt er das spez. Gew. des Eies /’ als konstant = 1,043 bzw. 1,05 an. Dieses schwankt
aber nach meinen Ermittlungen bei Kolibris (Trochiliden) und beim Strauß (Struthio)
von 1,05—1,24, je nach Stärke und spezifischem Gewicht (spez. Gew.) der Schale.
Viele seiner berechneten Eigewichte stimmen aber genügend, weil sich die Fehler
11
zufällig ausgleichen, welche unsere Formel vermeidet. Sein Faktor >17 ist für nicht-
elliptische Eier zu groß, sein spez. Gew. oft zu klein, da seine Versuchseier zum Teil
bebrütet waren.
Auch GrRoSSFELD (1938, S. 3) überschätzt wohl die Genauigkeit seiner Formel
G = 0,57 AB®, (2)
indem er deren unvermeidlichen Fehler zu +1%, angibt. Nimmt man die Additions-
konstante & bzw. 1 > g unserer genaueren Formel in deren Zahlenfaktor (0,542 o)
2
hinein, so ergibt sich für Haushuhneier (Gallus gallus domesticus) allerdings G — 0,57 AB?
bei ellipsoidischer Gestalt mit g = 1. Aber die Variation der Eigestalt, bei GROSSFELD
unbeachtet geblieben, bewirkt hier allein schon einen Fehler des Eigewichtes bis zu
6%, (wegen 9 = 0,94—1,00), so daß von nur 1%, im allgemeinen nicht die Rede sein
kann. Dies um so weniger bei Anwendung der Formel auf andere Arten, bei denen
die Eigestalt noch mehr variiert (p = 0,87—1,01). In diesem Falle dürfte auch nicht
immer das spez. Gew. des Eies zu konstant 1,09 (in GRossFELDS Faktor 0,57 enthalten)
angenommen werden, da es, wie gesagt, bei den verschiedenen Vogelarten und im
allein zu beachtenden, völlig frischen Zustand der Eier von 1,05 bis 1,24 schwankt.
Für GROSSFELDS Zweck, nur die ungefähre Größenordnung zu bestimmen und dabei
ohne die Kenntnis der erst durch unser Buch gegebenen Schalengewichte auszukommen,
genügen seine Angaben freilich durchaus, übrigens sogar besser, als es nach seiner Ver-
gleichung mit HEINRoTHs (1922) Angaben in seiner Tafel (1938, S. 2) erscheint. Denn
die größten Abweichungen dort von HEINRoTHs Zahlen beruhen auf Irrtümern: z.B.
bei Accipiter nisus, A. gentilis und Corvus corone sind HEINROTHS Angaben (19, 59
und 17g) zu klein, daher die berechneten GROSSFELDS richtiger (24, 65 und 229).
Der große Unterschied bei Motacilla flava (2,0:2,8 g) beruht auf Verwechselung mit
Motacilla alba, der bei Larus canus (68:59 g) darauf, daß für GROSSFELDS Berechnung
die Breitenachse irrtümlich zu 45,1 statt zu 41,5 bei Rey (1905, S. 550) entnommen
wurde.
Diese beiden Formeln für das Eigewicht G, wie auch andere solche aus Amerika,
reichen gewiß für manche Zwecke aus, bleiben aber trotz aller Verbesserungsversuche
von dort so lange für genauere Werte unzulänglich, bis sie nicht nur den konstanten
Einfluß von Dotter und Eiweiß (unser Faktor 1,030 bzw. 1,035), sondern auch den
variablen der Eigestalt (unser Faktor #) und das variable spez. Gew. der Schale (y)
in den Formeln für das Eigewicht berücksichtigen, wie das in unseren Formeln von
Anfang an (1923) geschehen und publiziert ist (SCHÖNWETTER 1925).
1. Die Eigestalt
Die Eigestalt kann zwar ohne Messung qualitativ beschrieben werden, und als
sofort ins Auge fallende Extreme seien hier folgende Gestalten angeführt: Kugelig
sind die Eier von Siruthio, den meisten Spheniscidae, von Rhodonessa, von vielen
Faleoniformes, von den Alcedinidae, Psittacidae und Strigidae.
Langgestreckt, um das andere Extrem zu nennen, sind die Eier bei Gavia, Mega-
podius, den Trochilidae und bei Remiz.
Stark konisch zugespitzt sind die Eier von Aptenodytes, Colinus, Rollulus, Hydro-
phasianus und von manchen Passeriformes.
a) Länge A, Breite B und Achsenverhältnis k. Wenigstens die Länge der längsten
Längsachse von Pol zu Pol (A) und die der längsten Breitenachse müssen gemessen
werden, wenn man von qualitativen zu quantitativen Angaben über die Eiform fort-
schreitet. Dabei ist die Breitenachse B ein Durchmesser der größten auf der Längs-
achse A stehenden Querebene, sie gibt die größte Breite des Eies an. Variationsbreite
und Durchschnittsgröße der beiden Achsenmaße A und B sind in den Tabellen des
Teiles A (Band I-III) bei fast allen Arten und Unterarten zu finden, ebenso im
Text das Achsenverhältnis r
k=-- (3)
das weiter unten (S.20) besprochen wird. Alle diese Angaben betreffen in unseren
Tabellen in der Regel das ganze Verbreitungsgebiet der angegebenen systematischen
Einheiten (Taxa). Jüngere Vögel legen in der Regel kleinere Eier als alte Tiere, nordische
oft größere als südliche, auch wenn sie nicht subspezifisch getrennt sind. Für die Auf-
teilung nach den verschiedenen Einzelgebieten fehlt es noch fast völlig an genügenden
Unterlagen. Ein Beispiel sei hier angegeben, wie es auch bei Perdix perdix, Caprimulgus
indicus (Bd. I, S. 240 bzw. 636) und anderen im Systematischen Teil geschehen ist.
JOURDAIN (1925) macht auf die verschiedene Größe der Habichtseier (Aceipiter
gentilis) in verschiedenen Gebieten aufmerksam und deutet an, daß sich durch solche
Vergleiche, auch bei anderen Arten, die Möglichkeit ergibt, eventuell Unterarten
zu erkennen, eine Hilfe der Oologie für den Systematiker. Er gibt als Durchschnitts-
maße von
9 Eiern aus Lappland 63,6 x 48,6 mm, k=1,31,
TREE ‚„ Deutschland 58,3 x 46,4mm, k = 1,27,
10; „ Rumänien 56,2x43,9mm, k = 1,28,
10a „ Spanien 55,1x 43,0 mm, k = 1,28,
ER 2 „ Marokko 52,3x 41,6 mm, k = 1,27
an. Größeres Material macht die Unterschiede nicht ganz so deutlich, aber die Tendenz
bleibt erkennbar. Nach unseren Unterlagen messen (siehe auch Bd. I, S. 157f.)
27 Eier aus dem westlichen Nordamerika 59,3 x 45,6 mm, k = 1,30,
60 ‚„ ,, dem östlichen Nordamerika 59,1x45,4mm, k = 1,30,
12 Mathematischer Teil
125 Eier aus Finnland , 59,2 x 45,5 mm, k = 1,30, 3
150 ,„ ,„ Skandinavien und dm NW
der Europäischen Sowjetunion 58,7 x 45,2 mm, k = 1,30,
% „ „ NO-Sibirien 58,5 x 45,7 mm, k = 128,
150 ,„ _,, West- und Mitteleuropa 57,5 x 44,6 mm, k = 1,29,
100 ,„ _ , Deutschland 57,6 x 44,6 mm, k = 1,29,
15, „ Slawonien und Bosnien 57,3x 44,6mm, k = 1,29,
622%: ©, Holland 57,1x 43,9 mm, k = 1,30,
61.,,1%.3,. Belgien 56,1xX 437 mm k = E28
Bis 5, ‚S-Sibirien z 56,2 x 43,8 mm, k = 1,28,
10 ,„ , Korsika und Sardinien 55,4x 42,7 mm, k = 11,30.
Sahen wir hier verschieden große Eier einer Art aus verschiedenen geographischen
Gebieten mit in den Durchschnitten fast konstanter Gestalt (gleiche k), so kann diese
in anderen, ähnlichen Fällen auch stärker variieren, wobei das k mit zunehmender
Eigröße wächst, die größeren Eier länglicher werden oder umgekehrt. Zum Beispiel
hat Cecropis daurica striolata in China G = 1,97 g mit k = 1,39, in Indien aber G
— 2,43 g mit k = 1,45 und auf Java G — 2,94 g mit k = 1,48. — Im Gegensatz hierzu
findet man bei den Eiern von Cecropis s. senegalensis aus NO-Afrika und aus dem
Keniagebiet G =4,0g mit k = 1,41, jedoch bei solchen aus Uganda G nur 2,45 g,
aber mit k = 1,48, also daß hier die kleineren Eier länglicher wurden.
b) Typische Eigestalten in den Familien. Für ganze Familien typisch und nahezu
konstant sehen wir die Eigestalt bei den Struthionidae, Apterygidae, Gaviidae, Phoe-
nicopteridae, Megapodiidae, Scolopaeidae, Pteroelidae, Strigidae, Musophagidae, Mero-
pidae, Trochilidae, &albulidae u. a., charakterisiert entweder durch weitgehende An-
näherung an die Kugel oder an das Rotationsellipsoid, bei den Schnepfenvögeln (Scolo-
pacidae) an den Kreisel. Die übrigen Familien weisen variante Zwischenformen auf,
häufig das, was ich die ‚gewöhnliche‘ oder ‚„normalovale‘‘ oder kurzweg ‚ovale‘
Eigestalt nenne. Ich verstehe darunter eine Form vom mittleren Achsenverhältnis
aller Eier überhaupt, also mit k = 1,34—1,40, und mit nur mäßiger Verjüngung
am unteren Ende. Aber auch stärkere Verjüngung (Zuspitzung) kommt sehr oft vor.
e) Kritik an der Einteilung der Eigestalten bei Des Murs und Kutter. Des Murs, der
1860, bei seiner Klassifikation, der Eigestalt (1860, 8. 63—65) einen zu großen Einfluß
einräumte, unterschied und bildete ab 6 Eiformen, deren Originalbezeichnungen
hier KÖnIG-WARTHAUSENS Verdeutschungen (1885, 8. 292) in Klammern beigesetzt
seien: eylindrique (walzenförmig), ovalaire (länglieh-gerundet bis stumpf-elliptisch
oder bauchig-oval), spherique (kurz-gerundet), ov&ee (ungleich-hälftig), ovoiconique
(birnförmig), elliptique (spitz-elliptisch). Ähnlich ist Kurrers Einteilung der Eier
(1889): 1. sphärische [Eulen (Strigidae)]; 2. stumpfelliptische [Tagraubvögel = Greif-
vögel (Falconiformes), Bienenfresser (Meropidae), Eisvögel (Alcedinidae), Jakamars
(Galbulidae), Tauben (Columbidae), Dickfüße (Burhinidae), Wüstenläufer und Brach-
schwalben (Glareolidae)]; 3. spitzelliptische [Pelikan (Pelecanus), Kormoran (Phala-
crocorax), Tölpel (Sula), Schlangenhalsvogel (Anhinga), Steißfüße (Podieipedidae)];
4. walzenförmige [Segler (Apodidae), Großfußhühner (Megapodiidae)]; 5. kreiselförmige
[Regenpfeifer und Kiebitze (Charadriidae), Steinwälzer, Strandläufer und Schnepfen
(Scolopacidae) und andere]; 6. eigentlich eiförmige [Sing- (Sperlings-) und Hühnervögel
(Passeri- und Galliformes)].
Man sieht die Schwierigkeit, mit z. T. sehr dehnbaren Begriffen auszukommen
oder bessere Worte zu finden. Was heißt schon „stumpfelliptisch‘‘? Ellipsen sind immer
an beiden Enden stumpf, haben nieht zwei Spitzen, wie mit solchen Des Murs seine
Abbildung des „elliptique‘‘ ausstattet. Deshalb gebe ich zur Andeutung der Gestalt
eu
Berechnungen für Zwecke der Oologie 13
in den Eibeschreibungen das jeweils durehschnittliche Achsenverhältnis k — =
(Formel 3) an und füge statt der eigentlich noch nötigen Dopphöhe b bzw.
des Teilungsverhältnisses auf der Achse A, e = - (siehe weiter unten S.20) (4)
anschaulicher ein ergänzendes Wort hinzu, z. B. „normaloval‘ (d.h. nur mäßig ver-
jüngt) oder „spitzeiförmig‘“ (d.h. spitzer als ‚‚normal‘“) oder ‚Zweispitz‘‘ (an beiden
Enden zugespitzt) oder ‚„elliptisch‘“‘ (d.h. nicht verjüngt, sondern an beiden Enden
in gleicher Weise gerundet). Wo nur k allein angegeben oder die Gestalt überhaupt
nicht erwähnt ist, handelt es sich immer um das ‚gewöhnliche‘ Oval, das in großem
Umfang vertreten ist. Man gewöhnt sich leicht daran, in k = 1,07 ein fast kugeliges
Ei sich vorzustellen, in k = 1,70 ein ungewöhnlich gestrecktes, in k = 1,38 eins der
mittleren Gestalt, wie etwa bei unseren Haushuhneiern (Gallus gallus domesticus)
gewöhnlich, und kann auf diese Weise auch alle Zwischenformen viel exakter und
übersichtlicher erfassen als mittels der 6 alten Kategorien. Je nach der Größe von
k ist die Gestalt etwa wie folgt:
k = 1,00—1,23 sphärisch k = 1,41—1,50 länglichoval
und elliptisch k = 1,51—1,70 gestreckt
k = 1,24—1,33 breitoval k —= 1,71—2,00 sehr gestreckt
— 1,34— 1,40 normaloval bis abnorm lang.
Ausführliches über die Gestaltskriterien k und e siehe S. 20.
Eine mathematische Kugel (k = 1,00) kommt bei normalen Vogeleiern ebenso
wenig vor, wie eine walzige Gestalt mit k = 2. Des Murs (1860) hat offenbar kein
Ei gemessen, sonst würde er nicht (auf Seite 264 und 325) den Apodidae und dem
Ieterus gularis ein Achsenverhältnis von fast 1:3 (k = 3,0) beilegen. Wenn auch
PEnarD (1910, II, S. 112) von manchmal fast dreifacher Länge als Breite bei Glaueis
hirsuta berichtet, beruht das sicher ebenso auf einer optischen Täuschung bei der
Schätzung, wenn nicht eine ganz extreme Abnormität, eine Monstrosität aus krank-
haftem Uterus vorlag. Die Wölbungen und Zuspitzungen lassen besonders längliche
Eier länger erscheinen, als sie in Wirklichkeit sind. Diese optische Täuschung ist bei
manchen Stücken frappant, wie ich mit Besuchern meiner Sammlung oft erlebte. Die
länglichsten Eier in dieser bilden ein Gelege von @avia stellata mit k = 1,93 und 1,90,
was schon anomal ist, um so mehr, als diese beiden Stücke gegen die Regel nur wenig
verjüngt, fast walzig sind. Auch einige normale Eier von Seglern (Apodidae) und
Kolibris (Trochilidae) haben k bis 1,75. — Als kleinsten Wert bei normalen Eiern
fand ich k = 1,07 wiederholt bei Athene noctua, der nur durch mein rundlichstes
Zwergei des Haushuhns (Gallus gallus domestieus) mit k = 1,03 unterboten wurde.
Ein kleines langwalziges Haushuhn-Ei zeigte k — 2,03 und ein ebenso abnorm ge-
formtes Gefangenschaftsei des Nandus (Ahea) meiner Sammlung sogar k — 2,09, beide
Stücke sonst von normaler Schalenentwicklung. HELLEBREKERS (1950, S. 21) berichtet
von einem monströsen Ei der Brandseeschwalbe (Thalasseus sandvicensis) mit k — 2,13.
SZIELASKkO (1920) unterscheidet 12 Gestaltgruppen, die er noch in je 3—5 Formen
auflöst, und gibt Zahlen zur umständlichen Zeichnung der Eikurven an (siehe S. 130).
Wegen der Variation der Eigestalt selbst bei derselben Rasse erscheint es unmöglich,
eine klarer umrissene, kurze Einteilung der rund 9700 Arten und Rassen unserer
Liste zu geben, wollte man einigermaßen präzis und vollständig sein, denn hier fließt
alles ineinander. Wir beschränken uns deshalb in der folgenden Zusammenstellung
auf die extremen Formen, zwischen denen sich alle übrigen bewegen, sowohl bei großen
Arten, wie bei kleinen. Diesen fehlen aber fast ganz die ausgesprochen kugeligen
Formen, wenn wir von den kleinsten Psittacidae und Aferopidae sowie von Ispidina
14 Mathematischer Teil
absehen. Alle anderen Gestalten lassen sich in vielen Familien finden; ungewöhnliche
fallen aber bei geringer Eigröße meist weniger auf. Sehen wir doch z. B. bei Phylloscopus,
Parus und Certhia zuweilen Eigestalten, die der bizarren bei Aptenodytes (Halbkugel
plus spitzem Konus) nichts nachgeben, bei Remiz das langgestreckte Oval der Flamingo-
(Phoenicopterus-)Eier, bei den Kolibiris (Trochilidae) die walzig gedehnte Ellipse,
die hier oft stärker als bei Megapodius ausgeprägt ist.
d) Normale Eigestalten (Fig.1). Nahezu Kugelgestalt: Strauße (Struthionidae),
manche Tinamidae (Tinamus tao, Orypturellus undulatus), einige Spheniscidae (be-
sonders Pygoscelis papua), unter den Enten Rhodonessa und Lophodytes, unter den
“ Greifvögeln manche Aceipiter, manche Aguila, Pernis, Gypaetus, Circaetus, Milvago,
Falco. Dann einzelne Trappen (Otididae: Lophotis ruficrista, Eupodotis humilis und
Sypheotides indica); Cursorius temminckii; viele Papageien (Psittacidae), alle Muso-
phagidae; unter den Kuckucken COlamator coromandus und Crotophaga major sowie
Centropus ateralbus, C. sinensis, C. bengalensis; alle Eulen (Strigidae) außer Tyto;
LEI
VOODD
Figur 1. Normale Eigestalten (Original).
1 — sphärisch, 2 — elliptisch, 3 — „gewöhnliche“ Eigestalt,
4 — ovoid, 5 — walzig, 6 — gestreckt-oval, 7 — Kreisel,
8 — birnförmig, 9 — Trogon-Gestalt, 10 — Zweispitz.
GEWICHT ing
DOTTER IMEI
Figur 2. Gewichtsverhältnisse der Bestandteile von ein-, zwei- und dreidottrigen Hühnereiern (Gal-
lus gallus domesticus) nach Curtis 1914.
Das Schalengewicht bleibt fast konstant. Das Gewicht des Eiklars wächst proportional.
Leptosoma: viele Eisvögel (Alcedinidae), alle Bienenfresser (Meropidae) und Sägeracken
(Momotidae), bei den Trogoniden Pharomachrus und Harpactes, alle Galbulidae und
Bucconidae, manche Pitta. Dann kommt im System eine große Lücke mit niehtkugeligen
Eiern bis zu den Icteriden mit Molothrus bonariensis als letzter-Art mit oft kugeligen
Eiern.
Sehr rundlich, aber am unteren Ende schwach oder stärker verjüngt sind außer
den schon oben genannten Eiern von kleinen Singvögeln (Oscines) und Aptenodytes
noch die von KRollulus, Steatornis und die von Lophura rufa und anderen Fasanen,
von Lophodytes, Eurypyga und Turnix. Hierhier zählen dann schließlich auch viele
der noch nicht erwähnten Falconiformes (Zlanus, Rostrhamus, Buteo u.a.) mit k
— 1,20—1,26. Es erscheint auffallend, daß sich solch niedrige Achsenverhältnisse
bei den Passeriformes als Durchschnittswerte so gut wie überhaupt nicht finden.
Man muß lange suchen, um einen Fall zu entdecken, wie z. B. Protonotaria citrea mit
k = 1,25, ein breites, stumpf gerundetes Ei. Vereinzelte weitere solche zwischen Ver-
wandten mit größerem k beziehen sich auf Arten, von denen unsere Listen nur wenige
Eier aufführen, die wahrscheinlich nur zufällig so rundlich sind, was gelegentlich
ja bei allen Arten vorkommen kann.
= Berechnungen für Zwecke der Oologie 15
Elliptische Eier: Gestreckt bei Rhea und Casuarius sowie bei den Kolibris (Trochi-
lidae). Mäßiger gestreckt bei Schwänen, Gänsen und Enten .(Anatidae), manchen
Störchen (Ciconiidae), bei einigen Tauben (Columbidae) nicht selten, als Regel bei
Hydrobates, Pterocles, Caprimulgus, Hemiprocne. Stärker gestreckt bei Megapodius
und Gavia (k = 1,60), C’hauna und Batrachostomus (k = 1,46). Fast walzig, weil an
den Längsseiten flacher gewölbt, als der Ellipse entspricht, bei den Kiwis (Apterygidae),
Albatrossen (Diomedeidae), Kolibris (Trochilidae), Salanganen (Collocalia) oder,
weil an den Polen flacher gewölbt, bei Crotophaga ani, manchen Pterocles und Capri-
mulgus. — Breitelliptisch: Gygis und Guira.
Zweispitze: An beiden Polen stärker verjüngt, als der Ellipse entspricht, bei Phoeni-
copterus (k — 1,65), Phalacrocorax, Colymbus (recte — Podiceps), Anhinga, Pelecanus
(zum Teil), Gymnogyps (k = 1,66), Vultur (k = 1,62), durchweg sehr gestreckte Eier.
Nicht immer so, aber zuweilen bei einigen ebenfalls hierher zu zählenden Reihern
(Ardeidae) und manchen Tauben (Ptilinopus, Caloenas, Otidiphaps, Goura), auch
bei manchen Crazx (k = 1,37—1,47).
Lag bei den vorigen Gruppen die größte Breitenachse (B) genau oder fast in der
Längsmitte, so rückte sie bei den nun folgenden „ovalen“ Eiern davon ab, wobei
ein breites (oberes) und ein „verjüngtes‘‘ bis zugespitztes (unteres) Ende entstand.
Hierher gehören die meisten Eier, vorwiegend mit mittlerer Verjüngung. Derartige
hat man in fast allen Familien, soweit hier nicht anderes berichtet wird. Es sind all
die vielen Arten, die an dieser Stelle unerwähnt bleiben,. da sie nichts Besonderes
bieten. Typ: Haushuhn (Gallus gallus domesticus). Von diesen Durchschnittstypen
weichen folgende Eigestalten ab:
Länglichoval: Sehr schlank, manchmal zum Zweispitz und zur Walze neigend:
Diomedea, Macronectes, Phoenicopterus, Platalea, Platibis, Apodidae, manche Ploceidae
[Ploceus zum Teil (frühere Melanopteryx, Symplectes und Sitagra), Malimbus (Ana-
plectes)], Aegintha, Remiz, Dicaeum eximium und andere. Nicht ganz so sehr gestreckt
bei Puffinus, Cygnus, Anser, Tachyeres, Somateria, Cathartes, Grus, Balearica. Um noch
einige kleinere Arten zu nennen: Upupa, Delichon, Myiophoneus, Babax, Psarocolius.
Breitoval: Ohne scharfe Spitze manche Francolinus, Pavo, Numida, viele Larus
und Sierna, viele Falconiformes (Gyps, Neophron, Circus und andere), Eupoda montana,
Burhinus, Pluvianus, Rhinoptilus, Glareola, Menura. Auch kleine Arten: Tyrannus,
Taraba, Macronyx, Erithacus rubecula, Chrysomma ‚Aegithalos, Climacteris, Emberiza,
Seiurus und Icteria. Mit kurzer Spitze zum Kreisel übergehend: Lophortyx, Perdix,
Rollulus, Scolopax, Attagis, Rhodostethia, Steatornis. Manche dieser Eier wurden wegen
der Variation schon vorher auch anders eingereiht, können auch zur nächsten Gruppe
gezählt werden. -
Kreisel: Mit hoch liegender größter Breitenachse und starker, konischer Zuspitzung,
charakteristisch für fast die ganze Ordnung Charadriiformes, jedoch in verschiedenem
Grad. Auch unter den Kleinvögeln findet man zuweilen diese Eigestalt. Sie fällt hier
nur weniger auf, trotz ganz gleichen Charakters. Am stärksten ausgeprägt bei Apteno-
dytes und bei den Charadriidae, Scolopaeidae, Reeurvirostridae, Phalaropedidae, Thino-
coridae, dazu Colinus und Hydrophasianus mit der aufs höchste getriebenen, fast
unvermittelten Zuspitzung. Weniger kreiselförmig sind die Eier bei Haematopus,
Dromas, Burhinus, Chionis, bei vielen Möwen (Larinae), mehreren Alken (Alecidae),
aber gar nicht bei den länglichovalen Brachyramphus und Synthliboramphus. — Uria
stellt einen Typ für sich dar insofern, als die schlanke Gestaltverjüngung oft schon
im oberen Eidrittel beginnt, der Rest also ganz besonders lang ausgezogen ist und
recht spitz endet, was manchmal zu einer flachen Einschnürung führt.
Walzige Eigestalt. Gemeint sind hier mehr oder weniger langgestreckte Eier, bei
16 Mathematischer Teil
denen die beiden Polgebiete gleichen oder fast gleichen Krümmungsradius besitzen,
der überdies größer als bei der mathematischen Ellipse ist. Solche Fälle kommen oft
bei Reptilieneiern vor, bei Vogeleiern sind sie aber außerordentlich selten, da sie hier
fast immer nur auf einer optischen Täuschung beruhen. Die Krümmung der Eiober-
fläche läßt jedes Ei kleiner und besonders schmäler erscheinen, als es ist, und eine
ganz klare Vorstellung der wahren Ellipsengestalt ist meist nicht in unserm Bewußtsein.
Bezeichnet doch selbst Des Mus (1860, S. 442), der sein ganzes System wesentlich
auf die Eigestalt aufbaut, also sich mit dieser eingehend beschäftigt hat, ein aus-
gesprochen zweispitziges Ei als Ellipse, mit der jene Gestalt nichts gemein hat als die
Kongruenz der oberen und der unteren Eihälfte. Bei gleichen Achsen unterscheiden
sich Zweispitz und Ellipse aber um 8—15% im Volumen. Meine ‚„walzigsten‘“ Eischalen
erwiesen sich bei genauer Untersuchung als regelrechte Ellipsen, mit höchstens ein
Zehntel Millimeter Abweichung. So bei Pterocles und Macrocephalon. Nur bei einem
Apteryx, einzelnen Gygis und Crotophaga betrug die Abweichung von der mathe-
matischen Ellipse 0,5— 1,0 mm sowie bei meinem abnorm gestalteten Rhea-Ei (159 x 76
mm, Achsenverhältnis k — 2,09!) als Maximum 2 mm, was bei diesen großen Dimen-
sionen praktisch die Ellipsengestalt nicht beeinflußt. Statt „walzig‘‘ sollte man also
„gestreckt elliptisch“ sagen, wenn man diese Eiform durch den Längsschnitt beschreibt.
Über die Gestaltvariation siehe S. 20— 27.
e) Abweichende Eigestalt bei nahen Verwandten. Die Gestalt ist bei
1. Tinamus tao und Crypturellus undulatus kugelig, bei den anderen Tinamiden
elliptisch;;
2. Aptenodytes stark zugespitzt, aber bei keinem der übrigen Pinguine (Spheniscidae) ;
3. Rhodonessa ausgesprochen kugelig, wie bei keiner anderen Ente (Anatidae);
4. Neuweltgeiern (Cathartidae) langgestreckt, Sagittarius bauchig, aber zugespitzt;
bei allen anderen Falconiformes nicht so;
5. Hydrophasianus auffallend spitz konisch, bei den anderen Jacaniden nicht;
6. Eupoda rundlich, zum Teil ohne Verjüngung, bei allen Verwandten länglichere,
stark zugespitzte Kreisel;
7. Clamator coromandus kugelig, bei allen anderen parasitischen Kuckucken (Cueu-
lidae) oval;
8. Tyto etwas gestreckt oval, bei den anderen Eulen (Strigiformes) mehr kugelig,
9. Strigops, Nestor, Calyptorhynchus, Cacatua länglich und verjüngt, bei den anderen
Papageien (Psittaciformes) rundlich ohne Verjüngung;
10. Ceryle rudis, ©. torquata, Ohloroceryle americana, Dacelo, Halcyon princeps an
einem Ende verjüngt, bei allen anderen Alcediniden rundlich, ohne Verjüngung,
11. Pharomachrus und Harpactes kugelig, bei den andern Trogoniden länglichoval;
12. Remiz länglich, fast walzig, bei den wohl verwandten anderen Meisen (Aegithali-
dae, Paridae) kurzoval.
f) Abnormitäten der Eigestalt. — I) Allgemeines. Bei den Eiern aller Vogelarten
kommen gelegentlich Mißbildungen vor, sei es hinsichtlich der Größe (Zwerg- und
Rieseneier) oder der Gestalt. Von letzteren sieht man Monstrositäten seltener bei
Wildvögeln, schon weil sie sich hier meist der Beobachtung entziehen, häufiger beim
Hausgeflügel und bei anderen Arten, denen die Eier für Genußzwecke oder aus Anlanß
von Hegemaßnahmen wiederholt genommen werden, was zu den Vogel entkräftenden
Nachgelegen führt. So beim Kiebitz (Vanellus), bei Möwen (Larinae), und Enten
(Anatidae). Nach LEEGE (1911, S.44) und GoETHE (1937, S. 54) werden jedoch auch
andere Ursachen in Frage kommen, aber Näheres wurde darüber nicht bekannt. Auf
Nahrungsmangel, Erschöpfungszustände oder Erkrankungen des Eileiters wird man
manche Fälle der Abnahme der Eieranzahl im Gelege oder im Nachgelege zurückfüh-
VE
ir
\ renkönnen — aber auch Vermehrung kommt vor — und die Verminderung der eventuell
a are en ne RM I TERN DER Tr ’ X
2 , ’) en i t -
ud ra ie 5 -
r 4 ! T z \ t
ax: -Y e Es er v S
» Berechnungen für Zwecke der Oologie “ 17
sogar gänzlich ausfallenden Färbung. Hierher gehört auch das Auftreten von Zwergeiern
im Gelege, das ausnahmsweise überhaupt nur aus solchen bestehen kann. Viel seltener °
findet man 1-3 Dotter enthaltende Rieseneier, die ihre Ursache vermutlich in einer
Erschlaffung der Uterusmuskulatur haben bei gleichzeitiger Hypertrophie der das
Eiweiß liefernden Teile des Eileiters (Fig. 2). Abnorm große Eier sind meist relativ
dünnschalig und werden hauptsächlich bei domestizierten Enten und Gänsen (Anatidae),
Hühnern (Gallus) und Fasanen (Phasianus) beobachtet, wo sie das Zweifache der
normalen Größe und sogar mehr erreichen können, vielleicht im Zusammenhang
nit einer überreichlichen und bequem erreichbaren Nahrung ohne Beunruhigung & durch
Feinde. Bei frei lebenden Arten, insbesondere bei Sperlingsvögeln (Passeriformes),
wurde meist nur eine geringe Vergrößerung beobachtet, mit der fast immer eine nur
unbedeutende oder gar keine Veränderung des sonstigen Aussehens der Eier ver-
bunden ist. Anders bei den Zwergeiern, deren Volumen bis zur Erbsengröße absinken
kann. Intensivere Färbung und Zeichnung, Körnchenbildung auf der rauheren Schale,
entweder rundlichere oder mehr walzige Gestalten gehen gewöhnlich damit a
‚Weil sich dabei die normale Schalenstärke wenig oder gar nicht ändert (vergl. S. 95),
erwecken solche Stücke den Eindruck, sehr dick schalig zu sein. Relativ zu ihrer Größe
sind sie es tatsächlich. |
Nieht immer brauchen krankhafte Zustände die Ursache für Äbnormitäten zu
bilden, denn auch Erstlingseier gesunder Vögel fallen oft recht klein aus. Gemäß den
Erfahrungen in großen ran (Gallus) kann nach JAacog (1929) aus dem
Auftreten von Zwergeiern und Deformitäten nicht auf unentwickelte Ovarien oder
auf ein Beenden der Legeperiode geschlossen werden, da sich jene Abnormitäten
gerade bei den besten Legehennen fanden. Hanrzsch (1905, 8.201) beobachtete
bei Somateria des öfteren Spar- und Zwergeier bei Beginn der Legezeit. Gegen eine
ungewöhnlich starke Inanspruchnahme des Legeapparates infolge wiederholter \ Weg-
nahme der Eier sind .die verschiedenen Arten anscheinend verschieden empfindlich.
DIETRICH (1929, 1934), der in den deutschen Vogelschutzstätten reiche Erfahrungen
an riesigem Material erwarb, fand bei der Sturmmöwe (Larus canus) unter Tausenden
von Eiern nur einmal ein Sparei, ebenso unter Zehntausenden der Brandseeschwalbe
(Thalasseus sandvicensis) bloß eins. Hier zeigte sich die Wirkung bei Nachgelegen anders,
nämlich in vielen unbefruchteten Eiern und im Rückgang ihrer Maße und Schalen-
gewichte. Bei Stock- und Brandenten (Anes plaiyrhynchos und Tadorna tadorna)
fanden sieh überhaupt keine Abnormitäten, auch nicht bei den kleinen Regenpfeifern
(Charadrius), als deren Eier noch für Küchenzwecke gesammelt wurden. Eiderenten
(Somateria mollis ssimA) reagierten nur durch Verminderung der Eieranzahl im Gelege.
Dagegen zeigten sich bei den Lach- und Silbermöwen (Larus ridibundus und argentatus)
sowie bei den Seeschwalben (Sterna hirundo, paradisaea, albifrons, Thalasseus sandvi-
censis) und Austernfischern (Haematopus) nicht nur Zwergeier, sondern auch sonstige
Veränderungen der Schalen, Rauhigkeit, Knötchen, Abnahme der Pigmentierung.
Diese aber wird auch anders begründet sein können, weil z. B. fast ungefleckte weiße
Eier der Brandseeschwalbe (T'halasseus sandvicensis) auf Norderoog auch ohne Störung
in Jahren mit günstiger Witterung und bei guten Ernährungsverhältnissen zahlreich
vorkamen. Ebenso scheint hinsichtlich der Größenabnahme Unbekanntes mitzuwirken,
da die meisten Zwergeier sich in sonst ganz normalen Gelegen fanden. Wohl aber mag
Legemüdigkeit Gelege mit abnehmender Größe ihrer Eier erklären. Anschließend seien
einige Beispiele für Gelege mit abnorm kleinen und mit abnorm großen Eiern gegeben.
In übergroßer Zahl, aber ohne spezielle Beschreibung, weist GROEBBELS (1937, S. 332— 385
und 472—474) solche und andere Abnormitäten nach, von denen im Allgemeinen
Teil dieses Werkes noch die Rede sein wird. [Wir entnehmen daraus, daß solche Aus-
nahmefälle bei allen Arten vorkommen können. Angaben mit Maßen und Schalen-
3 Oologie, 41. Lieferung
18 Mathematischer Teil
%
gewickten machen Rey (1905) und Srtımmine (1932), auch DIETRICH (1929 und 1934),
ohne Schalengewichte HsAG und andere (1909 u. 1911)].
II) Abnorm kleine Eier im Gelege (siehe unter 3.d) und 4.g), S.33 und 98).
Perdix perdix: Sechsergelege mit G = 1,8g bis 12,5 g, allmählich wachsend. Normal
14,1 g. Größtes Ei des Geleges ist siebenmal so schwer wie das kleinste. (Sammlung
Haag, wie auch die beiden nächsten Fälle, siehe Haac 1911).
Buteo buteo: Dreiergelege. Ein Ei mit G = 25,5 g neben zweien mit je 53 g. Normal
60 2.
Sylvia borin: Zweiergelege. G = 1,65 g neben 2,45 g. Normal 2,25 g.
Anas platyrhynchos: GROEBBELS (1937, S.382, Abb. 8.383) berichtet von einer
Wildente, die in sechs Jahren 82 normale Eier legte, dann aber im folgenden Jahr
14 Zwergeier von 30—45 x 25—30 mm, also von 11 bis 24g. Normal 54 g (nach Lix-
coLN 1934).
Fulica atra: Achtergelege (Z. f. Ool. 16, S.45, 1906) mit 31,4x24,6=1,5g bis
46,5 x 30,7 = 2,7 g ZIEMER & KRAUSE, also mit G = 10,4 bis 23,7 g. Normal 36,5 g.
KoENIG-WARTHAUSEN (1885, S. 301—303) berichtet u. a. von folgenden drei Fällen:
Garrulus glandarius: Gelege mit abnehmender Eigröße aus der Sammlung KrÜPER.
Wahrscheinlich identisch mit ebensolchem in der Sammlung Haag, wo ich G=9,5g
und 8,9 g und 7,5 g und 4,7 g und 1,7 g feststellte. Normal 8,5 g.
Parus palustris: Zehnergelege, ‚sämtlich stark unter halber Größe von Goldhähnchen-
eiern“ (Regulus mit G — 0,74 g), also statt 1,23 g nur 0,35 g wiegend, fast wie die
kleinsten Eier der Kolibris (Trochilidae).
Luscinia megarhynchos: Vierergelege mit je 1,7 g statt normal 2,65 g.
Melanerpes erythrocephalus: BExt (1939, S.110) erwähnt ein Zehnergelege mit
G von 2,5 g bis 5,5 g wachsend. Normal 5,1.
Passer domesticus: Vierergelege aus Zwergeiern in der Sammlung Rey: G —=0,71g
bis 0,86 g. Normal 2,89 g.
Peironia petronia: Zwergei 1,20g, Normal 2,82g (Museum Wien. Fleckung am
spitzen Ende).
GOWLAND-BARNSTON bot Eier von durchweg nur halber Größe an: Corvus frugilegus,
Sturnus vulgaris und Scolopax rusticola, je ein Vierergelege.
Cygnus olor: fast kugeliges Zwergei (k = 1,16), 82 g (57 x 49 = 16,6 g. d = 0,99 mm
Rg = 20,3%!). Normal 340g (113x74= 390g, d=0,783mm, Rg= 11,5%).
(In der Sammlung Schönwetter wie auch die folgenden Fälle).
Falco tinnunculus: Fünfergelege mit G = 2,5 g neben viermal 20,5 g. Normal 21 g.
1
Zwergei — ie der normalen Größe.
Dendrocopos major pinetorum: Vierergelege mit G —= 2,1g und 4,4g und 5,0g und
5,2 g. Normal 5,3 g.
Sylvia curruca: Vierergelege mit je 1,0 g. Normal 1,4 g. Dabei ein Kuckucksei (Oueulus
canorus).
Sylvia borin: Einzelei 11,0 x 8,1 = 0,0156 g. G = 0,38g (Größe von Kolibrieiern, Tro-
chilidae). Normal 2,23 g.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 19
Monticola saxatılis: Dreiergelege halber Größe.
Phylloscopus cantator: Vierergelege mit drei normalen Eiern von je 1,10 g und einem
Zwergei von 0,38 g. Durchschnittliches Frischvollgewicht 1,06 g.
Allbekannt ist das Auftreten vieler Zwergeier beim domestizierten Kanarienvogel
(Serinus canaria). Mir liegen solche bis zur Erbsengröße vor mit G = 0,4g bis 0,7g
statt normal 1,5 g.
III) Abnorm große Eier im Gelege (vgl. S. 99). Ganze Gelege aus abnorm großen Eiern
blieben unbekannt. Es liegt nahe, daß solche überhaupt nicht vorkommen. Rey (1892,
S. 16) gibt für einige Beispiele großer Eier die Maße an, welche aber die Maxima unserer
Listen nur wenig oder nicht überschreiten, wie denn überhaupt den Rieseneiern viel
engere Grenzen gesetzt sind als den Zwergeiern. Zum Vergleich berechnete ich die
Frischvollgewichte (G), weil sie den Unterschied deutlicher machen, als es die Maße tun.
Ficedula h. hypoleuca: Vierergelege mit dreimal G= 1,55g und einmal 2,959.
Normal 1,70 g (17,4 x 13,4 mm : 22 x 16 mm).
Troglodytes t. troglodytes: Fünfergelege mit viermal G = 1,51g und einmal 2,35 8.
Normal 1,32 g (16,4 x 12,6 mm : 19,38 x 15,2 mm).
Phoenicurus ph. phoenicurus: Sechsergelege. Fünfmal fast normales G — 1,92 g neben
einmal 3,35 g (18,7 x 13,3 mm neben 22,7 x 16,8 mm).
Phoenicurus ochruros gibraltariensis: Fünfergelege. Viermal & — 2,18 g neben einmal
3,40 g. Normal 2,16 g (19,4 x 14,4 mm : 23,0 x 16,8 mm).
Sylvia borin: Zweiergelege. G — 2,10 g neben 3,34 g. Normal 2,23 g (20,0 x 14,7 mm:
23,38 x 16,4 mm).
Sylvia atricapilla: Vierergelege mit dreimal G = 2,16 g, einmal 3,18 g, normal 2,19 g
(19,7 x 14,7 mm : 24,2 x 16,0 mm).
Sylvia c. communis: Fünfergelege. Viermal G —= 1,77 g, einmal 2,40 g. Normal 1,78 g
(18,2 x 13,5 mm : 20,8 x 15,0 mm).
Certhia f. familiaris: Fünfergelege. Viermal G = 1,13g, einmal 2,37 g. Normal
1,18g (16,2 x 12,1 mm: 19,7 x 15,2 mm).
Alauda a. arvensis: Vierergelege mit dreimal G = 3,47 g, einmal 4,41 g. Normal
3,35 g (23,4 x 16,8 mm : 26,0 x 18,2 mn).
Galerida c. cristata: Vierergelege. Dreimal G — 3,44 g, einmal 5,13 g. Normal 3,24 g
(22,9 x 16,6 mm : 27,3 x 18,9 mm).
Passer m. montanus: Vierergelege. Dreimal G = 1,95 g, einmal 2,72 g. Normal 2,11 g
(19,5 x 14,3 mm : 23,0 x 15,0 mm).
Einige aus der Sammlung Schönwetter:
Coccothraustes c. coccothraustes: Riesenei 5,728 (27,2x 20,0 mm). Normal 3,89 g
(24,1 x 17,5 mm).
Anser amser (domesticus): Rieseneier 325g und 297g (115,5x 71,5 und 113,5 mal
69,3 mm). Normal bei der Wildform 160 g (86,0 x 58,0 mm). WAHLGREN (1871, S. 261)
erwähnt G = 390 g (127 x 75 mm), also das Zweiundeinhalbfache der Norm!
Anas platyrhynchos (domestica): Rieseneier 126g und 123g (77,2x 54,8 mm und
74,5 x 59,2 mm). Normal 68 g (60 x 45 mm), bei der Wildform 54 g (56,8 x 41,2 mm).
Phasianus colchicus mongolicus: Riesenei aus Gefangenschaft 53 g (59,0 x 41,2 mm).
Normal 33 g (46,3 x 36,2 mm).
I*+
X
‘also fast das Dreifache der Norm (1911, S. 85). ER d !
&
2 Bis Ga Ye Een ee ae RE
Ale Ä
20 Matkenfatischer 4 A ZEN,
# E " BL
ae reevesii: Riesenei aus en Be 51,2g (60, 2x 40, 1 u No rmal
32,2 8 (47, 0.x 35,5 mm). Er
Gallus gallus (domesticus): Riesenei 111g (75,1 x 52,2 mm). Normal bei den wild- ER Bi |
form @.g. bankiva) 53,3 g (57,0 x 41,5 mm). Auch 150 g (82,5 x 56,5) nach v. FRANKEN- En h
BERG (1937). — Eschita: Maximum in der Sammlung Haac: 160 g (91,0 x 57 mm), a es
Numida meleagris galeata: Riesenei 63,7 g (59,7 x 44,5 mm). Normal 41,5 g (49,0 mal Br“ BE
38,5 PER
Die a erwähnten großen Eier kleiner Arten sind zum Teil solche, die nach Fürbiig) ge E
und Größe sehr wohl für die des Kuekueks (Cuculus c. canorus) gehalten werdenkönnen.
Sie waren aber durchweg nach ihrem zu großen Reyschen Quotienten, also ihren u
dünnen Schalen, ohne weiteres als das zu erkennen, was sie wirklich sind, und dies
wurde durch das-Korn bestätigt. gr
IV) Vogeleier von asymmetrischer Gestalt oder mit einer Einschnürung am schlanken.
Ende sowie Monstrositäten. E Ar,
Betrachten wir weiter diejenigen Abnormitäten, die nach SZIELASRO (1920, S. 32) Fee {
„reiner Phantasie beruhen‘‘, tatsächlich aber wirklich vorkommen. Die im Allgemeinen
Teil angeführten Beispiele betreffen zunächst Eier mit sonst vollkommen normal aus-
gebildeter Kalkschale und Färbung. Aus ihnen wären in den meisten Fällen sicherlich
normale Junge zu erwarten gewesen, was bei weiterhin im Allgemeinen Teil zu behan-
deinden ‚‚monströsen“ Eiern (zum Beispiel Ei im Ei, Windei) nicht der Fall isst. n
diesem Mathematischen Teil konnten all diese abnormen Eier nicht besprochen werden.
g) Zahlenmäßige Behandlung der verschiedenen Eigestalten. I) Allgemeines. Für die
Untersuchung\und Beschreibung der Eigestalt (Eiform) geht man aus vom Längs-
schnitt. Liegt die größte Breitena ıchse (B) genau in der Mitte der Längsachse, so sind
die Längsschnitte Eilipsen oder symmetrische Zweispitze. Je weiter B von der Mitte
abrückt — mit andern Worten: je kleiner die sogenannte Dopphöhe ist —, desto mehr
verjüngt sich das entgegengesetzte Eiende und-spitzt sich immer mehr zu. Das Ei
wird zunächst ein Oval, zuletzt ein Kreisel. Unter der Dopphöhe (b) versteht man den
am stumpfen Ende gemessenen Abstand des Pols von der Breitenachse, ein wichtiges
Kriterium der Eigestalt. Da die gleichgroße Dopphöhe bei großen und kleineren Eiern
natürlich die Eiform in ganz verschiedenem Grade beeinflußt, benutzt man bei Be-
schreibungen und Berechnungen statt des b das von der Eigröße unabhängige Ver-'
hältnis
=
=. E
- | (4)
Dabei ist a der größere, b der kleinere der beiden Abschnitte, in welche die Längs-
achse durch die Breitenachse zerlegt wird. Das Achsenverhältnis
a
Br
ist das allein noch nötige, zweite Gestaltskriterium. Das Ei ist breit, kugelig, bauchig,
wenn der Wert von k klein ist, z. B. = 1,10, es ist länglich bei großem k, z. B. = 1,65.
II) Die Gestaltskriterien k und e. Die beiden Verhältnisse k und e bestimmen die Eiform
vollständig. Eine von mehreren möglichen Nutzanwendungen versucht SZIELASKO
(1920), indem er die gewöhnliche, wörtliche Beschreibung der Eigestalt ersetzte durch
4 bzw. 7 Zahlen, die er aus k und e ableitete. Sein Verfahren ist zwar exakt und mathe-
matisch interessant, jedoch gänzlich unanschaulich, daher für die Eibeschreibung
Berechnungen für Zwecke der Oologie 21
praktisch ohne Nutzen. Nötig sind diese ‚Szielasko-Zahlen‘ nur für die theoretische
Konstruktion einer bestimmten Eikurve aus allein gegebenem A, k und e (A = Längs-
achse), worüber am Ende dieses Mathematischen Teiles B (S. 130) ausführlich berichtet
wird, wie auch über das ‚Normalei‘, das aus den Durehschnitten der Gestaltskriterien
zu konstruieren ist (S. 136).
Die durchschnittlichen k sind für die meisten Arten in den Eibeschreibungen unsres
Systematischen Teiles (Band I—III) angegeben, für weitere im Einzelfall leicht aus den
Achsen zu berechnen. Für 400 paläarktische Arten, auch für die e, hat das SzIELASKO
(1913) durchgeführt. Aus seinen Zahlen ermittelt, geben die folgenden Zusammen-
stellungen wenigstens einen Überblick und Beispiele für die Sachlage.
Welche Eiformen durch das Zusammenwirken von k und e entstehen, lehrt die
folgende Liste, zusammengestellt nach der ‚Allgemeinen Formentafel‘‘ SziELAskos (1920)
unter Beibehaltung seiner Benennungen.
k e
kugelig 100-1711 7.002775
gestreckt kugelig 1,12—1,23 1,00— 1,47
elliptisch 724 1959 700095
walzenförmig 1,60-—-1,83 1:00 21515
eylindrisch 1,5341,95 2002 738
2 eiförmig 2A 7 1,16— 1,47
' ovalär 1,48—1,83 1416 631
kreiselförmig 22447 1,48— 1,79
spindelförmig 1,45 1,95 1,32 —b,47
konisch 1,48-1,59 1,48—1,95
birnförmig Bet 1,48— 1,95
\ pfeilförmig 1.72 1.33 1,48— 1,95
In der Tabelle 1 (S.21) sieht man den verschiedenen Grad der Häufigkeit der
wechselnden Größe von k und e, in der dann folgenden Tabelle 2 (S. 22) die Durch-
schnittswerte und die Variation für eine Anzahl von Familien. — Wir erkennen aus
Tabelle 1 zunächst, daß extreme k, also für fast kugelige (bis k = 1,20) und sehr ge-
Tabelle 1. Häufigkeit der verschiedenen Werte der Gestalts-
kriterien k und e (s. S. 21)
a Anzahl
der Fälle
Anzahl
der Fälle
=.
B
1,00-1,10 228 — 28,0%,
1,11—1,20
1,00—1,10
1,11—1,20
244 — 30,0%
1,21—-1,30 1,21-1,30 | 181 = 22,1%
1,31—1,40
Da st gige,
1,41—1,50 141-150 | 40 = 4,9%
1,51—1,60 1,51-1,0 | 3= 41%
1,61—1,80 1,6%, | 1,61—1,80 YA
zusammen 797 Fälle = 100% | zusammen 815 Fälle = 100%
22
streckte Eier (mit k über 1,50) in nur 6—7°%, der 797 untersuchten Fälle auftreten, auch
sehr große e recht selten vorkommen, von 815 Fällen nur 10% mit e über 1,40. Die
kleinsten e, also bei größter Breite nahe der Eimitte, finden wir am ersten bei den
elliptischen Eiern vom Kiwi (Apteryx), Kasuar (Casuarius), Steppenhuhn (Syrrhaptes
paradoxus), Ani (Crotophaga ani) und Kolibris (Trochilidae), auch bei manchen zwei-
spitzigen, z.B. der Kormorane (Phalacrocoracidae), Reiher (Ardeidae) und Tauben
(Columbidae). Das größte e= 2,15, schon an der Grenze des Abnormen, zeigt ein
Lummenei (Uria) meiner Sammlung (83,5 x 48,8 mit k = 1,71 und Dopphöhe b
— 26,5 mm). Dann folgt als spitzigste aller Kreiselformen Hydrophasianus mit e = 1,85
und k = 1,32. Über 1,60 als e haben nur einzelne Eier bei den Charadriidae und Apo-
Mathematischer Teil
Tabelle 2. Beispiele für die Werte der Gestaltskriterien k und e in paläarktischen Familien
Zusammengestellt aus Angaben von SZIELASKO (1913), s. S. 23
Anzahl | Anzahl Familie Mittelwerte Variation | Unter- | Variation | Unter
der der A schied schied
unter- | Arten k=Z|e=-|k=A:B| Ak | e=- Ne
suchten B b b
Eier
22 y. Pelecanidae 1,60 1,14 1,52—1,72| 0,20 1,02— 1,29 0,20
31 3 Gaviidae 1,59 1,27 1,52—1,67 | 0,15 1,16—1,38 0,22
199 5 Colymbidae 1,50 1,14 1,41—1,71 | 0,30 1,05—1,22 0,17
(recte Podicipedidae)
23 3 Phalacroco- 1,62 1,29 1,54—1,70 | 0,16 1,22— 1,40 0,18
racidae
111 9 Ardeidae 1,37 1,07 1,24—1,53 | 0,29 1,00— 1,19 0,19
371 20 Anatidae 1,45 1,19 1,26—1,69 | 0,43 1,04— 1,38 0,34
842 35 Accipitridae, 1,27 1,12 1,06—1,47 | 0,41 1,01—1,33 0,32
Falconidae
85 5 Tetraonidae 1,42 1.21 1,31—1,56 | 0,25 1,12— 1,32 0,20
131 10 Phasianidae 1,32 1,30 1,23—1,38 | 0,15 1,13— 1,43 0,30
180 8 Rallidae 1,41 1:17 1,25—1,52 | 0,27 1,02— 1,42 0,40
> — a 1,41 | 1,48 | 125-1,62| 0,37 | 1,26-1,65 | 0,39
Scolopacidae
570 25 Laridae 1,42 as 1,31—1,54 | 0,23 1,20— 1,58 0,38
157 7 Aleidae 1,52 1,49 1,35—1,69 | 0,34 1,20— 1,81 0,61
46 5 Columbidae 1,34 1,05 1,21—1,49| 0,28 | -1,00—1,15 0,15
34 1 Tytonidae 1,35 1,22 1,350—1,40 | 0,10 1,16— 1,28 0,12
124 11 Strigidae 1,22 1,04 1,12—1,30 | 0,18 1,00— 1,12 0,12
48 2 Apodidae 1,61 1,87 1,53—1,69 | 0,16 1,14— 1,65 0,51
98 9 Picidae 1,35 1417 1,25—1,44 | 0,19 1,00— 1,27 0,27
164 9 | Alaudidae 1,34 1,24 1,23—1,50 | 0,27 1,10— 1,40 0,30
162 8 | Motacillidae 1,33 1,18 1,23—1,50 | 0,27 1,01— 1,30 0,29
282 5 Laniidae 1,31 1,27 1,20—1,42 | 0,22 1,10— 1,41 0,31
666 16 Turdidae 1,36 1,24 1,18—1,58 | 0,40 1,02—1,45 0,43
720 30 Sylviidae 1,34 1,16 1,21—1,46 | 0,25 1,01—1,35 0,34
234 8 Paridae u. 1,25 1,16 1,20—1,41| 0,21 1,01—1,23 0,22
andere
„Meisen‘
942 29 Fringillidae, 1,36 1,20 1,18—1,52 | 0,34 1,02—1,40 0,38
Ploceidae
770 10 Corvidae 1,41 1,25 1,25—1,65 | 0,40 1,09— 1,46 0,37
Die vier Zahlen der Variationsspalten gehören jeweils zu vier verschiedenen Eiern. — Die Ak und
Ae geben ein Maß für die Größe der Gestaltsvariation.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 23
didae. Große k, charakteristisch für langgestreckte Gestalt, zeigen sich besonders beim
Kondor (Vultur gryphus), Albatros (Diomedea), Flamingo (Phoenicopterus), Löffelreiher
(Platalea). Kleine k unter 1,06 kamen mir nicht zur Kenntnis, weder bei den Tinamiden
und bei Rhodonessa, noch bei den Eulen (Strigiformes), Papageien (Psittacidae) und
andern „kugeligen‘ Eiern, selbst nicht bei abnormen Haushuhneiern (Gallus gallus
domesticus).
Im Durchschnitt aller Arten überhaupt ist k = 1,38, durchschnittliches e = 1,22
(beide Zahlen nach den damals vorliegenden Werten, nicht nach den vermehrten in
Band I—III ergänzt. Hrsg.)
Die in Tabelle 2 (S. 22) nebeneinander gestellten Mittelwerte der k und e in palä-
arktischen Familien sind nicht immer koordiniert, sondern es kann am einzelnen Ei
ein größeres k mit einem kleineren e verbunden sein und umgekehrt. Die zahlenmäßige
Angabe der Gestaltsunterschiede gestattet auch kleine solche bei nahestehenden Fami-
lien zu erkennen. Die Eier der Gaviidae (k = 1,59) sind gestreckter als die der Colymbidae
(heute Podicipedidae) (k = 1,50). Bei diesen liegt die Breitenachse näher an der Mitte,
als dies bei den Seetauchern (Gaviidae) der Fall ist (e = 1,14 und 1,27). Bei T'yto zeigt
sich eine größere Längsstreckung (k = 1,35) und eine mehr exzentrische Breiten-
achse (e = 1,22) gegenüber den mehr kugeligen Eiern der Strigidae (k = 1,22 bei
e — 1,04). Innerhalb der paläarktischen Fauna variiert das Achsenverhältnis k an-
scheinend am stärksten bei den Enten (Anatidae), Greifvögeln (Accipitridae und Fal-
conidae), Drosseln (Turdidae) und Rabenvögeln (Corvidae), am wenigsten bei den
Phasianiden, merklich stärker bei den nahestehenden Rauhfußhühnern (Tetraonidae).
Die größte Abwechselung in der Lage der Breitenachse (e = 1,20— 1,81) liegt vor bei
den Alken (Alcidae), insbesondere bei den Lummen (Uria), die kleinste bei den Eulen
(Strigidae) (e —= 1,00— 1,12). Selbst bei den Drosseln (Turdidae) und Grasmücken
(Sylviidae) werden kleine Unterschiede erkennbar. Emberiza citrinella und E. calandra
besitzen zwar das gleiche k = 1,30. Aber gegenüber der Goldammer mit e = 1,07 hat
die Grauammer e = 1,34, also eine weniger rundliche, Gestalt ihres Eies und damit
ihres Uterus. — Soweit nach SzIELASKos Unterlagen (1913). Durch Einbeziehung
niehtpaläarktischer Familien ergeben sich etwas andere Werte besonders bei den
Greifvögeln (Falconiformes) wegen der gestreckten Gestalt der Eier von Amerika-
Geiern (Cathartidae), für die Phasianidae wegen der länglicheren Eiformen bei Den-
drortyx, Lerwa, Lophophorus, Argusianus und anderen, und bei den Tytonidae, die im
Familiendurchschnitt nicht ganz so längliche Eier haben wie unsere Schleiereule (7’yto
alba) oft, deren k SzZIELASKo (1913) überdies etwas zu groß berechnete (k = 1,35 statt
1,25.)
Innerhalb der Gattungen variieren die k viel weniger als innerhalb der Familien. War
bei diesen in obigem Material der durchschnittliche Unterschied zwischen größtem und
kleinstem k 0,26, so ist er in folgenden Gattungen nur 0,075. Die Variationsbreite der k
ist nämlich zum Beispiel bei
7 Arten und Unterarten Milvus 1,24—4,29
Bay -;; e Er Phasianus 1,23— 1,32
#2: ,; 2 24 Numenius 1,40—1,48
I E a en Alcedo 1,14—1,22.
[Bei 52 Arten und Unterarten von Buteo schwankt k zwar meist nur von 1,23—1,28,
aber 12 Formen weichen ab, 1 mit 1,20, je 2 mit 1,21, 1,29 und 1,30, 1 mit 1,31, 3 mit
1,32 und 1 mit k = 1,33. Bei Halcyon, von SCHÖNWETTER (MS) mit 24 „Arten“ und
k = 1,10—1,18 zu diesen im k-Wert wenig variablen Gattungen gerechnet, ist durch
Erweiterung um Halcyon chloris (früher Sauropatis), wodurch die Formenzahl auf 51
stieg, das Bild verändert: k schwankt von 1,10— 1,27, also sehr weit.
24 Mathematischer Teil a vo ve f
Ä . > Er “IE en
Wir kommen auf diese Streichungen aus der Liste SCHÖNWETTERS (auch M egapodius
und Uria passen nicht mehr hierher) unten bei den Ergänzungen aus neuer Literatur De
(S. 141) zurück. Hrsg.] Fa
Verwendung. finden die Werte k und e nicht nur bei der Beschreibung der Eier, 2%
. sondern auch bei den verschiedenen oologischen Berechnungen und bei der mathe-
matischen Konstruktion der Eikurven, wovon in unseren oo. Abhandlungen de
Rede sein wird.
III) Die Reduktionsfaktoren @ und c als Gestaltsfaktoren. Wie beseits angedeutet,
bringen wir zur Berechnung des Eigewichts (G) und der Eioberfläche (0) aus den
%
Ellipsoid-Formeln in diesen variable Reduktionsfaktoren an, und zwar >
Er Eivolumen (8) °
- Ellipsoidvolumen )
und
Eioberfläche
Er S (6).
Ellipsoidoberfläche ,
in den Ellipsoidformeln für Eivolumen und Eigewicht, im Mittel — 0,93.
cin den Ellipsoidformeln für Oberfläche und Schalendicke, im Mittel = 0,9.
Bevor unsere Methoden der Ermittlung der Größen dieser Faktoren erläutert werden,
nehmen wir die Ergebnisse voraus. Näherungsweise ist c = 1,029 bis 1,049.
1. Kugel und Ellipsoid (beide Hälften gleich gerundet): o—=1,c=1;z.B. bei den
Flughühnern (Pteroclidae), Papageien (Psittacidae), Eulen (Strigiformes), Nacht-
schwalben (Caprimulgidae).
2. Oval = gewöhnliche Eigestalt (einseitig nur wenig verjüngt): 9 = 0,99—0,%6,
e=1; z.B. bei Hühnern (Gallus) und Möwen (Laridae). _
3. Ovoid (wie vor, aber stärker verjüngt): a = 0,95—0,92, ce = 0,97— 0,94; "ZB.
beim Rebhuhn (Perdir), Kiebitz (Vanellus), Brachvogel (Numenius).
4. Kreisel (stark konisch zugespitzt): o = 0,92—0,87, e = 0,94—0,88; z. B. bei
Schnepfen (Scolopaz), Strandläufern (Erolia), Königspinguinen (Aptenodytes patagonica).
5. Spindel (langgestreckt, lang zugespitzt): o = 0,93—0,89, e = 0,95 —0,91; z. B. bei
den Lummen (Uria). j
6. Zweispitz (an beiden Enden stark verjüngt): & = 0,91—0,87, e = 0,92—0,88;
z. B. bei Steißfüßen (Colymbidae, recte Podicipedidae), Flamingos (Phoenicopteridae),
manchen Kormoranen (Phalacrocoracidae), Reihern (Ardeidae), Löffelreihern (Pla-
taleidae). .
7. Walze (an beiden Enden flacher als die Ellipse): = 1,01, ce = 1,02; fast nur beim
Ani (C’rotophaga ani) und Kolibri (Trochilidae) beobachtet, einmal beim Kiwi (Apteryx).
Wegen der geringen Variation dieser Zahlen kann bei ihrer Schätzung zum praktischen
Gebrauch kein erheblicher Fehler entstehen.
I
Zwischenformen werden interpoliert. Auch Ausnahmen gibt es. Mir kamen vereinzelt
Kreisel vor vom gleichen Volumen wie beim Ellipsoid mit denselben Achsen, da ein weit
nach oben gerückter Breitendurchmesser das Manko an der Spitze ausglich.
Das 9 = 0,87—1,00 modifiziert den Zahlenfaktor in der Eigewichtsformel (r/6 mal
dem spez. Gew. von Eiweiß plus Dotter — 0,5236 x 1,035 — 0,542) und ändert diesen
ab von 0,472 bis zu 0,547. — Das c leistet sinngemäß dasselbe in der Oberflächenformel
und variiert von 0,88— 1,02. (Liste der ce siehe S. 110.)
7
Berechnungen für Zwecke der Oologie 25
IV) Ermittlung der Reduktionsfaktoren. Ermittelt habe ich die g an Hand genauer
Abzeichnungen der Längsschnitte von größeren Eiern durch Zerlegung in 1 cm breite
Streifen von oben her, denen am Ei als Kegelschichten auffaßbare Abschnitte ent-
sprechen, die durch Mittelung der beiden Deckflächen als Zylinderschichten mit der
Höhe h — 1 leicht und schnell berechnet werden können und in Summa das Eivolumen
(V) ergeben. Da h = 1 als Einheit aus der Formel verschwindet, läuft die Sache auf die
Berechnung von Kreisflächen hinaus, für welche techhische Tafeln die Arbeit ver-
einfachen. Die Restabschnitte an den Polen wurden als Umdrehungs-Paraboloide
berechnet, deren
Volumenp;;aboloia = OB hr? r. (7)
Das so tete Eivolumen dividiert durch das als x/6 AB? ermittelte Volumen des
Ellipsoids derselben Achsen
Van. — Sb | (8)
ergibt den gesuchten Faktor o. Die Volumenbestimmung durch Wasserverdrängung ist, -
bei Benutzung von Eischalen, wie wir im Abschnitt 3a ausführen werden, zu umständ-
lieh, gefährdet die Objekte und ergibt keineswegs bessere Resultate.
Am genauesten erhält man die o aus direkt gewogenen Fris&hvollgewichten (G), die
in größerer Anzahl aber nur von Eiern der Haushühner (Gallus gallus domesticus) zur
Verfügung stehen mit nur beschränkt verschiedenen Eigestalten. Für weitere Fälle
halfen wir uns mit der indirekten Ermittelung der G aus der vollständig mit Wasser
gefüllten Eischale vom Gewicht G,,. Es ist
G=1,030(G, +), (9)
wo t der Zuschlag wegen des von der Temperatur abhängigen spez. Gewichts des
Wassers ist. Aus unsrer einfachen G-Formel folgt dann
IE NE
P TOR AB 0,542 AB?
(vgl. Seite 28).
Der erste Wert setzt ein direkt gegebenes Frischvollgewicht G voraus (Beispiel 1). Da
das erforderliche Schalengewicht g sich erst nach dem Aushlasen ergibt, dieses aber
eventuell unterbleiben soll, berechnen wir g näherungsweise aus dem in unseren Listen
ersichtlichen durchschnittlichen Rg, als dem prozentualen Anteil des Schalengewichts
am Eigewicht (Formel (35), S. 44). Die Achsen A und B werden gemessen. Die Bei-
‚spiele 2—6 für verschiedene Eiformen sollen das Vorgehen auch bei leeren gewogenen
Eischalen erläutern.
1. Haushuhn (Gallus gallus domesticus): Gewöhnliche, mäßig verjüngte Gestalt.
58,0 x 41,2mm. Frischvoll gewogen zu G = 53,53 Gramm. Rg = 9,6%, von G, also
g = 5,15 Gramm. Demnach ist
er 53,53 — 2,57 Sn
15 0529558:0: 212-413 1.538360 5
Die getrocknete Schale des dann zerbrochenen Eies wog nur 4,78 Gramm. Das ändert
das Resultat auf o = 0,959. Der Unterschied von 0,004 ist für unsere Zwecke bedeu-
tungslos.
26 Mathematischer Teil
2. Aechmophorus major: Längliches, ausgesprochenes Zweispitz, also schon extreme
Form. 62,1 x 37,5 = 5,00 Gramm. Voll Wasser: G, = 43,50 + 0,04 Gramm, also
„02 208 43,528 2,50 42,34
? 7 0,542.62,1-375-375 47,33
3. Vanellus vanellus: Klobiges, sehr spitzes Ei (Kreisel). 45,5 x 33,1 = 1,34 Gramm.
Voll Wasser: G, = 24,00 + 0,02 Gramm, also
1,03 - 24,02 — 0,67 24,07
? — 0,542.45,5-33.1-331 27,0 ME9L,
4. Uria aalge: Sehr lang gestreckt spitz. 83,5 x 48,6 — 11,75 Gramm. Voll Wasser:
G, = 99,50 + 0,09 Gramm, also
1,03 - 99,59 — 5,87 96,71
? 7 0,542. 83,5-48,6-486 106,90 us
5. Dryocopus martius: Stärker, als gewöhnlich, verjüngt. 35,5 x 25,7 = 0,794 Gramm.
Voll Wasser: G, = 11,97 + 0,01 Gramm, also
1,03... 1,98 —0,40, 1711,34
? 7 0,542: 35,5-25,7.28,7 12,71. z.
6. Caprimulgus carolinensis: Kaum merklich verjüngtes Ellipsoid. 35,7 x 26,3
— 0,75 Gramm. Voll Wasser: G, —= 13,23 + 0,01 Gramm, also
1,03 - 13,24 0,370 0.5.27
? 7 0,542:35,7:26,3-26,39 1339 nr
Zur Ermittelung der Reduktionsfaktoren e maß ich Oberflächen der verschiedenen
Eigestalten indirekt. Der genau gezeichnete Längsschnitt wurde wiederum in Schichten
zerlegt, aber anstelle gleicher Höhen dieser traten gleiehe Kantenlängen s = 1 em. Der
Mantel der Eiabschnitte ist dann
| Ogimante = S(tı + Ta) r (12)
und wegen der Einheit von s einfach gleich dem mittleren Durchmesser der Scheibe
mal x, wofür es zur Vereinfachung der Rechnung gleichfalls Tafeln gibt. Die Reste an
den Polen wurden als Kugelhauben aufgefaßt mit der Oberfläche
Ok ugeinaube = 21. MR: T; (13)
wo h die Höhe der Haube ist, aber der Radius eines Kreises, der sich der gegebenen
Kurve am Pol bestens anschmiegt (Krümmungsradius), mittels eines Zirkels auszu-
probieren. Die Summe der Mantelstreifen ergibt die Oberfläche des Eies
Our = B’Kre. (14)
Wird diese dividiert durch die berechnete Oberfläche des Rotationsellipsoids
.=B®K, (15)
wobei K ein von k abhängiger Reduktionsfaktor ist, der in Abschnitt 6 besprochen
wird (S. 109), so ergibt sich das gesuchte c. Die Ergebnisse sind in den Tafeln für e
Berechnungen für Zwecke der Oologie 27
und K auf Seite 109/110 niedergelegt. Unsere Formel B?’K wird auf Seite 108 erklärt. —
Leider gibt es keine Methode zur unmittelbaren Ausmessung der Eioberfläche. Versuche
mit aufgeklebten Papierstreifen bekannten Flächeninhalts sind unzulänglich.
2. Das Eivolumen (V)
Nach dem zuvor Gesagten ist das Volumen des Eies gleich dem des Ellipsoids mit
denselben Achsen multipliziert mit dem Reduktionsfaktor o.
V = 0,5240 AB?. (16)
Für das Velumen V; des Eiinhalts an Dotter und Eiklar mindern sich beide Achsen je um
die doppelte Schalendicke, also
V, = 0,5244(A — 2d) (B — 2d)2. (17)
Entsprechend das Volumen der Eischale
V=(B-d)%-.K-ce-d (18)
(betr. d und K siehe S. 80 und 109, Abschnitt 4a und 6).
Das kleinste Volumen fand ich beim Ei des Kolibris Phaethornis ruber mit 0,22 cm?,
das größte bei Aepyornis titan mit 10680 cm? (1:48500). [Beim Strauß (Struthio)
1400 em?, beim Haushuhn (Gallus gallus domesticus)-50 cm?.]
3. Die absolute und die relative Größe der Vogeleier
Ein Hauptmerkmal aller Eier ist ihre Größe. Sie festzustellen, kommt in diesem Werk
1. wegen des großen Wertes, der dem Schalengewicht beigemessen wird, und 2. wegen
vieler Beziehungen zu biologischen Problemen eine besondere Bedeutung zu.
a) Ermittlung der Eigröße ohne Berechnung, insbesondere mittels der Wassermethode.
In unseren Listen drücken wir die Größe der Eier einmal aus durch die Maße der beiden
Hauptachsen (Längsachse ‚A‘ von Pol zu Pol und größte Breitenachse ‚„B‘‘) unter
Beifügung des Schalengewichts ‚‚g‘‘. Dann ein zweitesmal durch das Frischvollgewieht
„G““ als das beste und anschaulichste Maß zum Vergleich der Eigrößen untereinander,
wenngleich bei den wenigen ganz besonders dickschaligen Eiern das Volumen vielleicht
noch geeigneter erscheint. Gemeint ist das Gewicht des frisch gelegten Eies im Zustand
vollkommener Füllung der Schale, also solange noch keine Luftkammer darin vorhanden
ist.
Mit der Entstehung und dem ständigen Wachsen der Luftkammer durch Verdunstung
mindert sich das Eigewicht erheblich, im Durchschnitt bei 20 Arten um etwa 16%, am
Ende der Bebrütung (Näheres siehe S. 122), beim Kochen während beliebiger Dauer
nur um etwa 2%.
Gleich nach dem Trockenwerden wiegt der geschlüpfte Jungvogel etwa zwei Drittel
des frischen Eies (HEINRoTH 1922, S. 274— 275).
In zerbrochenen Schalen, die sehr lehrreich sein können, und auch sonst fand ich
manchmal sehr große Luftkammern (siehe S. 30). Da oft schon bei frisch gelegten
Eiern eine solche, wenngleich sehr kleine Vakuole vorliegt, und ihre Größe ohne Zer-
störung der Schale nur schwierig oder gar nicht feststellbar ist, überdies direkt gewogene
Eier wilder Vögel nur von wenigen Arten und in ganz geringer Anzahl bekannt wurden,
auch keineswegs immer ‚‚frischvoll‘‘ waren, berechnete ich für unsere Listen die G
Ri en
hi - - y . 2 u r #
a. u . nt ne Tape ı* a t0= =
z y7 5 u A Br) A Ya Ki "ni ”
‚28 Mathematischer Teil Aa ke 5 &% = = Klir}
KR
durchweg grundsätzlich aus A, B, g unter Berücksichtigung der RE: Tigeiat
und der spez. Gewichte von Schale und Inhalt, worauf wir unten eingehen (S. 31). HER
Wegen der variablen Luftkammer ist die Wägung der mit Wasser gefüllten Eischale Y ae
zur Ermittlung der G selbst unter Rücksichtnahme auf das spezifische Gewicht dee
Inhalts nicht zuverlässiger, aber viel umständlicher und voller Gefahr für Objekt und 22
Sammlung. Wenige so benutzte Eischalen verursachten in glasverdeckten Kästen eines“ % 2.
Museums das Verschimmeln fast des ganzen übrigen Inhalts an Eischalen. Aushoch-
glänzenden, einfarbig weißen Eiern wurden matte mit gelben Stockflecken. Überdies
kann diese Methode jeweils immer nur ein Ei erfassen, die unsrige bei vorliegenden
Durchschnittsmaßen, wie sie unsre Listen bringen, ergibt gleich den Durchschnitt von E
beliebig vielen Eiern, auch wenn man diese gar nicht in Händen hat. Und meistens
braucht man richtig gebildete Durchschnittszahlen für Schlußfolgerungen zum Er-
kennen naturgesetzlicher Zusammenhänge. Mittelbildung nur aus den extremen Längen
und Breiten ergibt nur Näherungswerte. Man muß schon alle Einzelangaben addieren
und durch ihre Anzahl teilen. Beim Zusammenziehen der Durchschnittswerte aus
mehreren Serien, die etwa der Literatur entnommen werden, muß die jeweilige Anzahl
der für sie benutzten Objekte rechnerisch berücksichtigt werden. Der Geübte wird das
am schnellsten durch proportionale Verteilung der immer kleinen Unterschiede machen.
Man darf jedenfalls nicht einfach die Durchschnitte von 5 und 50 und 200 Eiern addieren
und die Summe durch in diesem Falle 3 dividieren. Wiederholt konnte ich bei meinen
sehr vielen Zusammentragungen Widersprüche oder wesentliche Abweichungen in den
Angaben aus solch unzulänglicher Mittelbildung erklären. Zwerg- und Rieseneier hat 2
man dabei leider nicht immer weggelassen und auch dadurch das Ergebnis entstellt,
wenn nicht eine sehr große Menge von nicht so abnormen Objekten vorlag. i
Die durch die Berechnungsmethode ermöglichte Mitteilung aller Eigewichte G wird °
jeder nicht nur Eier sammelnde, sondern sie auch studierende Oologe zu schätzen wissen.
Sie können vielen Zwecken dienen und sind für die Vorstellung und den Vergleich der
Eigrößen, wie bereits erwähnt, ganz bedeutend anschaulicher als die Achsendimen-
sionen. Zum Beispiel wird wohl niemand ohne weiteres den Maßen 51,6 x 50,5 und
62,1 x 46 und 65 x 45 und 74,6 x 42 mm ansehen, daß sie bei gleicher Eigestalt mathe-
matisch genau gleichgroßen Körpern entsprechen, nämlich 68,90 em? bei ellipsoidischer
Gestalt.
Unter anderem ermöglicht die Berechnung der Frischvollgewichte (G) festzustellen,
in welcher Reihenfolge die Eier eines Geleges abgelegt wurden, falls deren tatsächliche
Gewichte zur Zeit der Entnahme aus dem Nest bekannt sind. Das Ei mit dem größten
Gewichtsverlust wird das zuerst abgelegte sein. Oder man berechnet — eventuell zur
Kontrolle — die Volumina nach unserer Formel und damit das spez. Gew. der Eier.
Ebenso lassen sich Eigewichtsangaben in der Literatur nachprüfen, die leicht von ange-
brüteten oder der Verdunstung ausgesetzt gewesenen Eiern stammen können oder mit
anderen Mängeln behaftet sind, und dann zu falschen Schlußfolgerungen Anlaß gebein
Ein Beispiel siehe Seite 32.
Weil aber meine Berechnung der G nicht jedermanns Sache ist und für gewöhnlich
Übung im Schätzen der Gestaltsfaktoren zur Reduktion des Rotationsellipsoids auf die
jeweils vorliegende Eigestalt verlangt, wird mancher Interessent weiter die Methode der
Wasserfüllung der Eischale anwenden. Uns ermöglichte sie die Berechnung der Gestalts- {
faktoren aus den Eischalen (S. 25). Sie kann ja auch zur Nachprüfung der Berechnung
der G dienen. Mittels einer Pipette gelingt die vollständige Füllung leicht. Aber man
darf die Luftkammer (s. Tabelle 3, Seite 30) nicht unbeachtet lassen, die oft durch
Eintrocknung der Schalenhaut nach der Entleerung sehr groß geworden sein kann,
indem, wie oft, die Membran sich mehr als anfänglich von der Kalkschale ablöste.
Zerstörung des Häutchens ist daher bei dieser Methode erforderlich für genaue Be- A
stimmungen, und beim Zurücklegen in die Sammlung muß erst die vollkommene
mi
4 r
i iR u) s $ j 4 EN
Fr L - rw
Berechnen a Zwecke der Oologie a
ie herbeigeführt sein, um Sale zu verhüten. Das Gewicht
' der mit Wasser gefüllten Schale ergibt dann, mit 1,030 als dem spezifischen Gewicht des
Inhalts multipliziert, das Frischvollgewicht G des untersuchten Eies. Dabei ist die Ver-
minderung des Wasservolumens durch die Quellung der Schalenhaut praktisch be-
deutungslos. Das spezifische Gewicht des Inhalts ist zwar tatsächlich etwas höher
(1,035), betrifft aber nur das innere Volumen, während der Faktor 1,030 das ganze Ei
einschließlich Schale erfaßt. Schon v. REICHENAU (1880) verwies auf die Wassermethode
(und auf den Begriff des relativen Eigewichts), HEINROTH hat sie 1922 in großem
Umfang und mit gutem Erfolg angewandt, wenngleich ohne die hier angegebene Ver-
besserung.
. Für sehr genaue Gewiehtsbesiimmungen nach dieser Wassermethode müßte das nach
der Temperatur veränderliche spez. Gew. des Wassers berücksichtigt werden. Bei
Benutzung von Wasser über 4°C fallen die Eigewichte ein wenig zu leicht aus und wären
. daher mit folgenden Faktoren zu multiplizieren:
8°C 1,000120 15°C 1,000852
10°C 1,000264 16°C 1,001007
11°C 1,000356 18°C 1,001352
12°C 1,000461 20°C 1,001741
14 °G 1,000 710 ‚22°C 1,002174
Wasser von 15°C verlangt also folgende Zuschläge (t) in Gramm zum Gewicht (G,) der
mit solchem Wasser vollständig gefüllten Eischalen:
a 50 75 100 200 500 1000
t 0.085 0,0213 0,0426 0,0639 0,0852 0,1704 0,4260 0,8520
Beispiel: Eine Eischale von Struthio camelus australis wurde nach Zerreißung der
Luftkammer-Membran mit Wasser von 15°C gefüllt. Die Wägung ergab 1415 g. Ver-
besserung wegen desspez. Gew. von Dotter und Eiklar (Faktor 1,030) = +3%, = +42,5g8.
Zuschlag t wesen der Wassertemperatur = 0,000852 x 1415 = 41,2 s, zusammen
io) ? l 2 ©?
1458,7 g. So also mittels der Wassermethode.
Bei gleichfalls 15°C Wasserwärme verlangt Aepyornis titan (12,69.kg) + 10,81 g als
Zuschlagsbetrag t, Casuarius bennetti 'hecki (778g) + 0,668, Uygnus olor (340g)
+ 0,290 8, Anser anser (166 g) + 0,141 g, Haushuhn (Gallus gallus domesticus) (58 g)
+ 0,049 5, Haustaube (Columba livia domestica) (18 g) + 0,015g. Die Zuschlags-
beträge (t) sind also für unsere gewöhnlichen Zwecke ganz unerheblich.
Wir vergleichen dieses Ergebnis mit dem anschließend zu besprechenden, sich aus
unserer Bereehnungsmethode ergebenden: Die Eidimensionen waren 151,4 x 126,2
— 265g. Schalendicke = 1,95 mm. Daraus folgt gemäß der strengen Formel 20 für das
Eigewicht (siehe S. 31): G = 1,035 x 0,524 x 147, 5x 122,3 x 122,3 + 265 — 1461,58.
Fehler 2,3 g = 0,2%. — Der Gestaltsfaktor o tritt hier nicht in die Erscheinung, da er
wegen der ellipsoidischen Eigestalt = 1 ist. Beider Wassermethode kommt er überhaupt
nicht in Betracht.
b) Berechnung des Eigewichts als des besten Vergleichswertes für die Eigröße. Wie
gesagt, ist unter G (Frischvollgewicht) das Gewicht des Eies in dessen ganz frischem
Zustand, also noch ohne Luftkammer, zu verstehen.
gem. (19)
also gleich dem Volumen des Eies mal seinem spez. Gew., wobei I’ —= 1,05—1,24. Wie
auf Seite 44 gezeigt wird, kann man dieses auch ohne Wasserbenutzung aus dem
relativen Schalengewicht (Rg) ermitteln. — Auf dem für dieses Buch im Prinzip be-
nutzten Wege kommen wir zur Berechnung des G aus dem Volumen (V;) des Eiinhalts
28g‘82 | 919°08 | 099°61 GgL’eT | T6LTT | ga8’6 | ar8'8 | 0982 | 828‘9 | 968‘7 | 967 04
wu
174 SOG‘LT | 976°7T IPT'IT | 098°6 sc6‘L | 911 | 9989 | oLL‘S | PLLH | 616€ 7
wu
06 9LF'7 7 geos’s | aHC‘L ssz‘9 | 689‘ | 080% | zorr | zıL‘e | FrT'e | SIE’ 12
wu
0% orL‘9 ILL | Fish | eeer | 1ssie | oLe‘E | ses‘z | Lor'z | S26°T cg
zs6r \Frer | Lese | este | ges’a | 9Lr | zar'a | SYLT | STH“T | 190°7 08
sere | 16% | 972 | 018‘ | 9967 | 6TL‘T | FıH‘T | 807°T | 7860 | 2810 fer
we wu
8 2 283% | 206‘ | gTıT | zac‘T | ZEE‘T | ZrIT | 796°0 | T91°0 | TAS‘O | 088°0 22
o uU
ge: a zıe‘T | FH T | Le2iT | 007°T | F960 | 982°0 | 629°0 | gr‘ | FTE°o 0%
an 2 E
= WIUI
R 01 g9pr‘T | 610°T | 8880 | F9z‘o | 2890 | 608°0 | z88°0 | ec2’0 sI
= BEL VERSINIET Op 9yoH — y umu
S JHWWLNIFNT JOP JOSSIWUIANCLT —= S 6 co8°o FOL‘O 09°0 eco 2z0F°0 2080 1020 97
UIUut
8 6880 | z9H°0 | SSE‘0 | 8080 | TEZO | FET’o #
UUL
"3. 007°7 un 10ss9wyDAan(T wur (/g UOA oyoy ww , ouro ‘3 rc‘, wn Yyormodıg L orE‘0 | E8T0 | 9520 | OLTO | ETTO el
5199) JOSSIWUDANCT ww (pr UOA J9WWUBNIFNT 9yoUy wu I U YA9PUTULIOA ‘I e74 an
9 | 967'0 | ZET'O | STT’O | 8L0'0 | 680°0 | OT
G ee DEE RE ENT
DV = Bee) = U —=A — dopurp4zstoayy dqeyy = uoumJoA "wur | wur | 080°0 | 0200 |0r00| €
G p u
"WWUBAIK) UT UOABDUY "NOUYO9LOG OPIOJOYLABT-SUOLNBION SIE PUIS HY OISNIOASIYUOTMOSTH OL =: ee mel or A
=) & G ır |+ys
lag)
IST UI IOWIWIBYINTF ADp SU9Sy9R Ay 93joJur Jen
AOASIU
IMST
"Ss OPEL
Berechnungen für Zwecke der Oologie 31
(Dotter und Eiweiß) mal dessen für alle Arten als konstant — 1,035 anzunehmenden
spez. Gewichts unter Addition des ganzen Schalengewichts:
G = 1,035V, + g = 1,035 - 0,524-0-(A— 2d)(B—- 2d? tg (20)
(Berechnungs-Beispiele s. Seite 29 und 121). Diese strenge Formel berücksichtigt
sowohl die spezielle Eigestalt und die Schalendicke als auch den Einfluß des variablen
Schalengewichts, wird aber praktisch nur für die allerdicksten Eischalen benötigt. Für
die übrigen Fälle genügt unsere einfache Formel
G = 0,5420 AB? + 0,50 g. (21)
Zugrunde liegt das Ellipsoidvolumen: V —= 0,524 AB? (Formel (8), aus dem sich
durch Multiplikation mit dem gewöhnlichen spez. Gew. 1,05 das Ellipsoidgewicht
ergibt (Faktor 0,55). Aus diesem folgt durch Anbringung des Gestaltsfaktors © und
Zufügung des halben Schalengewichts (g/2) diese einfache Formel für das Eigewicht G.
Die andere Hälfte von g ist schon im Ellipsoidgewicht enthalten, im Gegensatz zur
strengen Formel, wo vom schalenlosen Ei ausgegangen wurde.
Zwei Sonderfälle werden verständlich, wenn wir die obige Formel so schreiben:
G = 0,524 AB?o 1,05 + 1/2 g, (22)
wo 1,05 das spez. Gew. /' des Eies ist. Für © = 0,952 wird der Ausdruck o 1,05 = 1,00
und damit
G=Vol+1/2g (s. 8. 120) (23a)
Für © = 0,908 wird aus 0,5240 x 1,05 —= 0,50, und damit
G = 1/2(AB? + g). (23b)
Die erste dieser beiden Näherungsformeln will die Beziehung zwischen Volumen und
Eigewicht andeuten. Allgemeiner ist sie anwendbar in der Form
G = 1,050 Vol + 1/29. (23e)
Da das Volumen des Eies leichter zu bestimmen ist als das Eigewicht, wurde in der
Literatur beim Vergleich der Größen der Eier fast immer statt des Gewichts das
Volumen angegeben. — Die zweite Näherungsformel war mein erster Versuch zur
näherungsweisen Berechnung des Eigewichts aus den Dimensionen. Sie ist öfters
zitiert worden. Unsere „einfache Formel“ 21, abgeleitet aus der strengen, ist viel genauer.
Für von 2,0 wesentlich abweichende spez. Gew. der Eischalen setzt man statt 0,50 g
57
genauer -g. Die Verschiedenheit des Mengenverhältnisses zwischen Dotter
und Eiklar (20—60%,) im Ei hat für unsere Zwecke keinen beachtlichen Einfluß auf
das Eigewicht, weil das spez. Gew. von beiden zusammen in allen bei Vogeleiern vor-
kommenden Mischungsverhältnissen 1,0325 + 0,0015 beträgt. Das des Dotters ist
1,03, das des Eiklars 1,04. Bei Nesthockern, wie Sperlingsvögeln (Passeriformes),
Papageien (Psittaciformes), Eulen (Strigiformes) und Tauben (Columbidae) macht
der Dotter 15—25%, des Eigewichts aus, bei Nestflüchtern wie Enten (Anatidae),
Hühnern (Galliformes), Schnepfen (Scolopacidae) und (platzhockenden) Möwen
(Laridae) 235—50%,, solel wie bei den Reptilien, bei Megapodius sogar 60%. (Speziellere
. Angaben bei Hrınroru 1922, S. 182—228, 272—275 und STRESEMANN 1928, S. 415).
Wie gering der Unterschied unserer beiden Formeln für G ist, zeige ein Beispiel
beim größten rezenten Ei. Die strenge Formel (20) gibt für ein Ei von Struthio c. camelus
4 v
| REN en:
= Aa 3 F Mathematischer Teil RAR... Er = STAR.
r EN NER N
(mit 169 x 145 mm bei 314 Gramm = g, o—1 und da) ae _. 2098
: der Schale im Re Fall kennt, wird statt der Additionsgröße 0,50 g, die m x A
EEE ae ve Re
; re Bull 7 u Be
dagegen ergibt die einfache Formel (21) 2083 Gramm, also Abweichung. nur (
Grossfelds Formel (Formel 2) G = 0,57 AB? erbringt 2025 Gramm, Abweichung 5 3,26
nioch genügend genau. Bergtolds Formel (Formel 1), in unseren Zeichen: G = 0,524 AB?
- T', wobei er I'= 1,043 setzt, ergibt 1942 Gramm. Das ist um 150 g = 7,8% zu klein,
demnach zu ungenau. Das spez. Gew. des betrachteten Eies errechnet we zu Fe 90,3
nicht 1,043.
Wer eine Verfeinerung unserer einfachen Formel wünscht und das spez. '
— 1
für y =2,00 genau ist, g setzen, also statt Formel 21 die to beuukasezn fa "FE
e er
G = 0,5429 AB? + 8:
Das ergibt als Additionsgröße 0,473 g für y=1, 90 oder 0,524 g füry—=2, 10 oder
0,546 g für y = 2,20 und 0, ‚563 g für y = 2,30. Der Einfluß solcher Änderung (— 5% ERR
bis 113%, des Sehalengewichts) ist meistens nur 1%, des Eigewichts, da das Schalen-
gewicht im Durchschnitt nur 8%, des Eigewichts Küsnacht (13%, von 8% = 1%)-
. Eine unter vielen Nutzanwendungen der G-Berechnung ermöglicht uns, Literatur-
angaben für Eigewichte zum Schutz gegen Druckfehler und andere Mängel nach-
zuprüfen, wenn die Maße beigegeben sind. Dabei kann man auch den aus
einfachen G-Formel (21) sich ergebenden Ausdruck
G — 1/2g
AB?
benutzen, in dem y = 1,03 x 0,524# = 0,47—0,55 ist, weil 9 = 0,87—1,01. Ergibt
sich y kleiner als 0,47 oder größer als 0,55, so liegt ein Fehler ;= den zu Be
Angaben vor. Zum Beispiel findet man bei GROEBBELS (1937, S. 149) für Fre
tropica melanogaster 38,0 X 27,0 und 35,0x 25,2 und als Eigewichte 9,82 und 10,26. 2
Diese Achsenmaße entsprechen gut dem Durchschnitt in unserer Liste, 'aber die Ei ve. ze
10,26—0,40 9,86 >
gewichte erscheinen zu klein. Wir rechnen y, = BexDT au — 0,356 und a
9,82 — 0,35 9,47 ee
> — a 2. 2 1 n Er 3
Ya — 35x25» = — 0,426. Also sind beide Gewichtsangaben falsch, Ei her Be:
y unter 0,47 liegt. Die nähere Untersuchung ergibt denn auch, daß die „Gewichte“
gar keine solchen sind, sondern die mit ihnen verwechselten Produkte aus den ee
den Achsen. Überdies ist auch noch das eine Produkt schon ın der Quelle für die An-
gaben (BENsETT 1927) falsch, statt 9,82 muß dort 8,82 stehen. Die benötigten Scha-
lengewichte g wurden aus unserer Maßliste proportional abgeleitet.
€) Berechnung der Eidimension A und B aus dem Eigewieht & (vergl. die Pe
aus den Umfängen U und u Seite 119). Erstmalig stand ich vor dieser Aufgabe, als
mir 1922 für Aptenodytes forsteri ein Eigewicht — 450 Gramm bekannt wurde, aber
ohne Maße. Ich berechnete diese nach der aus unserer G-Formel folgenden Forskea
wobei A = kB (aus Formel 3):
G-05g G-0ög
ni rn ‚BApk ä
o—=0,% und k= 1,38 schätzte ich wie bei A. patagonica gegeben. Das ent
fehlende Schalengewicht g wurde aus dem relativen Schalengewicht = a 149 ya
E);
a
2
h
Berechnungen für Zwecke der Oologie 33
zu 63 Gramm berechnet. Da Rg bei den andern Pinguinen (Spheniscidae) im Maximum
13% ist, mußte es wegen des Wachsens der Rg mit der Eigröße G für den großen
Kaiserpinguin (A. forsteri) etwas größer sein, also 14%, während & und k von G un-
abhängig sind (siehe aber unten S. 141). Die Auswertung der Wurzel ergab B = 85,3
und A = 117,7 (wegen A = kB). 1928 maß ich als erste mir zu Gesicht gekommene
die beiden forsteri-Eier in Tring mit 122,5 x 83,5 = 65,45 Gramm und 122,5 x 82,1
— 56,47 Gramm. Ihre gemittelte Achsensumme ist 205,3 mm, die von mir für das
450-Gramm-Ei gefundene 203,0 mm, eine überrachend gute Übereinstimmung auch
in dem Schalengewicht (Mittel 61 g) und in den beiden Achsen; denn die Abweichungen
in diesen drei Werten betragen nur 3—4%. — Das Britische Museum besitzt außer
den drei in der Schausammlung liegenden forsteri-Eiern zehn weitere, bei deren Messung
(1934) sich eins in genauer Übereinstimmung mit den von mir im voraus errechneten
Maßen fand, nur ist die Schale 1,5 Gramm (= 2,4%) leichter, höchstwahrscheinlich
das Ei, von dem die Angabe „450 Gramm“ stammt. — Ähnlich lag der Fall, als ich
zur Aufklärung des bei HEImRoTH (1922, S. 209) mit 34 Gramm zu hoch angegebenen
Eigewichts der Sterna anaeihetus das zugrunde gelegte Ei der Nehrkornsammlung
errechnete, suchte und fand. Es gehört zu der etwas größeren Sterna fuscata. Damit
erwies sich das bei HEINROTH angegebene absolute Maximum aller relativen Eigewichte
(RG) in Höhe von 34°%% als Irrtum. — Wir gehen auf diese Fälle ein, um die Nützlichkeit
der G-Berechnung und ihren ausreichenden Grad der Genauigkeit weiter darzutun.
Im ‚‚Condor‘‘ 1924 brachte HannA 3000 Eigewichte von 124 Arten aus Südcalifornien
(0,37 bis 152 Gramm), leider ohne die zugehörigen Maße, die wir aber nach obiger
Methode wenigstens in guter Näherung errechnen können. — Beim Vergleich mit
unserem Material, besonders der durchschnittlichen Werte, zeigte sich meist gute
Übereinstimmung, doch waren Hannas Gewichte oft etwas niedriger als die unsrigen,
vermutlich, weil jene nicht immer von absolut frischen Eiern entnommen waren,
oder weil in Hannas Beobachtungsgebiet vielleicht Sippen mit kleineren Eiern leben.
Größere Abweichungen nur bei folgenden Arten:
1. Phalacrocorax auritus albociliatus. Nach Hanna ist G]; = 45,12 g. Die BEntschen
Maße (1922, S. 260) für 71 Eier ergeben jedoch 50,7 (in unserer Liste abgerundet 51) g.
Unterschied 12,4%, der Hannaschen Angabe.
2. Toxostoma l. lecontei. HANNA: Ga} — 4,86 g. Nach BEntschen Maßen (1948, S. 416)
G, = 5,50 g. Unterschied 13,1%, der Hannaschen Angabe.
3. Oreortyx p. picta. HANNA: G,; = 10,41 g. Nach BentTschen Maßen (1932, S. 43)
G;ı = 12,80 g, nach GRINNELL, Dixon & LinspAre (1930, S. 213) G, = 12,2 9. Unter-
schied 22,9%, bzw. 17,2%, der HannaAschen Angabe.
Man sollte diese Fälle aufklären.
d) Absolutes Eigewicht (&). Eigrößen an sich (Eigewichte) bringen unsere Listen
im Teil A (Bd. I—-III) für weit mehr als die beim Abschluß des SCHÖNWETTERSchen
Manuskriptes vorliegenden 9727 Arten und Rassen. G ergibt sich nach Formel (21)
aus den gleichungsweise geschriebenen Angaben für die Längsachse A und die Breiten-
achse B (beide in Millimeter) sowie g (in Gramm):
ANCB 0 (eingeführte Schreibweise der Maße, keine Formel). (27)
Für einen der kleinsten Kolibris, Phaethornis ruber, der selber nur 1,7 g wiegt, gibt
STRESEMANN (1934, S. 837) 0,2 g Eigewicht an, unsere Liste dagegen 0,38 g. Nehrkorns
kleinstes Ei, Mellisuga minima, mißt 10,9x 7,5 = 0,026g mit G = 0,34g. Mein
angebliches von Lophornis ornata zeigt 10,5 x 6,5 = 0,014g mit G = 0,249. Das
absolut größte bekannte Ei ist eins derer von Aepyornis titan im Britischen Museum
mit 340 x 245 — 3346 g, Volumen 10,7 dm? (also knapp 11 Liter), ursprüngliches
3 Oologie, 41. Lieferung
a 1 2
r gi h ee
34 Mathematischer Teil
Gewicht 12,7 kg nach meiner Berechnung. Das entspricht nach dem Gewicht 8 Eiern
vom Strauß (Struthio c. camelus) (& 1600 g) oder 220 Haushuhneiern (Gallus gallus
domesticus) (a 58 g) oder etwa 52900 des kleinsten vom Kolibri (& 0,24 g).
Als selbstverständlich gilt, daß der größere Vogel auch ein größeres Ei erzeugt,
und im großen und ganzen trifft das auch zu, jedoch besitzen gleichgroße Vögel nur
in beschränktem Maße gleichgroße Eier, wie wir sehen werden, wenn wir in dieser
Hinsicht viele verschiedene Arten betrachten. Für den abnormen Fall, daß selbst
bei einander ganz nahe stehenden Vögeln der größere das kleinere Ei hat, wurden
nur wenige Beispiele bekannt, da diese Frage noch kaum erörtert werden konnte,
weil für diesen Fall fast keine brauchbaren Vogelgewichte vorlagen, und bloße Flügel-
maße ein richtiges Bild von der Vogelgröße nicht verbürgen, auch nicht die um Schwanz
und Schnabel verkürzten Vogellängen, wodurch KuTTer (1839) und KvuscHEL (1895)
die Vogelgröße behelfsmäßig zu berücksichtigen suchten. Zlanus seriptus als kleinste
Art der Gattung besitzt größere Eier als seine größeren Vettern. Das einzige Ei im
Gelege von Batrachostomus moniliger (Flügel 117 mm) wiegt 6,7 g, das Ei des größeren
B. h. h:dysoni (Flügel 133 mm) nur 4,3 g. Dieser hat aber zwei Eier im Gelege. Jedes
der beiden Eier des Zonibyx modestus wiegt 22 g (Vogellänge minus Schwanz — 119 mm),
jedes der 3 Eier des größeren Eudromias morinellus nur 17 g (Vogellänge minus Schwanz
— 152 mm). Hier wirkt sich die geringere Eizahl im Gelege bei südlichen Arten aus.
Francolinus p. pietus (300 g) legt größere Eier (17,6 g) als der größere Francolinus
pintadeanus phayrei (340 g, Ei 15,9 g). Bei den Jacanidae hat unter den 8 Arten mit
Schalengewichten das kleinste Ei (7,1 g) nicht die kleinste Art, sondern die mittelgroße
Irediparra g. gallinacee. Etwa gleichgroße Eier (8,3 g) haben die kleine Jacana spinosa
jacana, die mittelgroßen J. sp. intermedia und spinosa sowie die noch etwas größere
Actophilornis africana. Als Maß für die Vogelgröße stand hier wieder nichts anderes
als Länge minus Schwanz zur Verfügung, was freilich nur für morphologisch gleich-
proportionierte Arten als Notbehelf brauchbar erscheint.
Eine Sonderstellung nimmt die Kiwi-Familie ein mit ihren verblüffend großen
Eiern: Apteryx australis mantelli, damals 1800 g schwer, legte im Londoner Zoo Eier
von 395 g. Das sind 22°, des eigenen Gewichtes, und das entspricht auch dem Durch-
schnitt bei den anderen Kiwis, deren mittleres Körpergewicht auf 2000 g zu ver-
anschlagen ist, das mittlere Eigewicht auf 433g. Die abnorme Eigröße wird noch
deutlicher, wenn man bedenkt, daß die anderen Vögel gleichen Gewichts im Durch-
schnitt nur 92,4 g schwere Eier legen: Goura c. cristata 49,8 g, Phalacrocorax c. carbo
58 g, Nyetea scandiaca 63,5 g, Ardea cocoi 75 g, Somateria m. mollissima 110 g, Gavia
arctica 122g, Anser albifrons 125g, Circaetus g. gallicus 136g. Die Kiwi-Eier sind
also 4 bis 5mal so schwer wie im Durchschnitt die Eier ebenso großer anderer Arten,
Tmal so schwer wie ein großes Haushuhnei (Gallus gallus domesticus). Überdies besteht
das Gelege nach OLIvEr (1930, S. 58) nicht immer aus nur einem Ei, sondern zuweilen
aus zwei. Vereinzelt wurden sogar Dreiergelege gefunden. — Das entgegengesetzte
Extrem stellt unser Kuekuck (Cuculus c. canorus) dar, denn die Eier gleichgroßer
anderer Vögel wiegen das Zwei- bis Achtfache der seinen. In Kurventafeln, welche
die Beziehungen zwischen Ei- und Vogelgröße darstellen, fallen nur die Kiwi-Eier
(Apteryx) und die Kuckuckseier (Cuculus) ganz isoliert weit ab aus dem Brrkueı der
Kurvenhaufen aller anderen Arten (s. Fig. 4).
Für die in unerwartet weiten Grenzen abändernde Eigröße bei gleichgroßen (gleich-
schweren) Vögeln findet man bei HEIsRoTR (1922, S. 278—279) folgende Übersicht,
aber angepaßt an unsere Schalengewichte:
Ein Vogel von 100 g kann folgende Eigrößen (Gewichte) haben:
Cuculus c. canorus 3,28 Turdus pilaris 6,88
Nymphicus hollandicus 5,7g Coturnix c. coturnix 8,2g
_
Fur,
Berechnungen für Zwecke der Oologie 35
Halcyon s. smyrnensis 11,48 Capella g. gallinagg 16,5 g
Otus 5. SCopS 12,45 Philomachus pugnax 21,08
Falco s. sparverius 15,7 8 Sterna a. anaethetus 25,48
In diesem Falle sind die Gewichtszahlen zugleich die Prozentzahlen der relativen
Eigewichte (RG).
e) Variation der normalen Eigrößen und -gewichte innerhalb der Art. Die Variation
von Eigrößen derselben Art in Teilen ihres Bereichs haben wir schon ganz zu Anfang
dieses Teiles B (S. 11) besprochen. Dazu gehörte der Hinweis auf die konstante bzw.
wechselnde Eigestalt, d.h. des Gestaltsfaktors k. In der folgenden Liste ist dagegen
_ die Variation ganzer Arten in systematischer Folge nebst der Eierzahl in ihrem Gelege
festgehalten. Die Zahlen bedeuten die Eigewichte in Gramm, die Prozentzahlen geben
die Schwankung um das Mittel aus den beiden extremen G, gemessen an diesem Mittel,
an (Meistens ist das G nur einer oder weniger Uuterarten angeführt. Hrsg.):
Maximum — Minimum
Swan Maximum + Minimum ee)
Art G Schwankung Eierzahl im Gelege
Colymbus (recte Podiceps) cristatus 30 — 48 23,0% 3—5
Ardea cinerea 48 — 72 20,0%, 4—5
Ciconia ciconia 90 130 18,2%, 4
Cygnus olor 300 —390 13,0% 5—7
Anser anser 140 —170 Ih 4—9
Anas platyrhynchos 4 — 68 21,4% 9—13
Nyroca marila 5620168 OU: il
Somateria mollissima 85 —125 19,095 5—8
Aguila chrysaetos 112 —172 2410 De
Buteo buteo JO a, 18,0% Mn
Falco peregrinus 40 °— 54 14,9%, 3—4
Falco tinnunculus 16 — 26 23,89% 5—6
Tetrao urogallus 46 — 58 11,5% 6—10
Perdix perdix 11 — 17 21,4%, 10—20
Phasianus colchicus 28 — 36 12,5% 10—12
Porzana parva 1. 12,5% DR
Gallinula chloropus 19 — 27 1,3% 6—8
Fulica atra 28 — 44 22,2%, 6—10
Otis tarda 120 —170 110297 2
Charadrius dubius curonicus 60V 20,0% 4
Numenius arguata 65— 90 16,1% 4
Limosa limosa 33—49 19,5% 4
Tringa totanus 19 — 24 11,09% 4
Capella gallinago 14— 20 17,6% 4
Lymnoeryptes minimus 12—13 20,0% 4
Larus argentatus 70— 120 26,4% 3
Larus ridibundus 32 —48 20,0% 3
Sterna hirundo 17— 24 171.09% 3
Thalasseus sandvicensis 29—43 19,5% 2—4
Alca torda 75— 105 16,2%, 1
Cuculus canorus 2,4—4,4 29,4%, 14—18
3*
36 Mathematischer Teil
Art G Schwankung Eierzahl im Gelege
Bubo bubo 65— 90 16,1%, =
Asio otus 19—25 13,6% 4—6
Strix aluco 36—45 114%, 3
Caprimulgus europaeus 6,0— 9,0 20,0% 2
Apus apus 3,0—4,0 14,3% 2—3
Alcedo atthis ispida 3,8—4,8 11,6% 6—8
Dendrocopos major 4,2—6,1 18,4% 5—7
Dryocopus martius 10—14 16,7% 4
Galerida eristata a Pe N | 196%, A—H
Alauda arvensts 2,9— 3,8 13,4%, 3a
Hirundo rustica _ 1,4— 2,4 26,3% 5
Riparia riparia 1,1— 1,7 21,4%, 5—6
Motacilla alba 2.0224 91% b=B
Lanius excubitor 4,5—6,1 15,10% 5—6
Lanius collurio 2,3—3,9 25,8% 5—6
Erithacus rubecula 1,3—2,8 21,7% 5-6
Turdus philomelos 4,8—7,0 18,6% 5
Acrocephalus arundinaceus ».8=3,6 123% 5
Acrocephalus palustris 15er 16,7%, 4—5
Sylvia borin 1,9— 2,9 20,8%, 5
Phylloscopus collybita 1,0— 1,4 16,7%, 5—7
Regulus regulus 0,65— 0,85 13,3% 8s—11
Aegithalos caudatus 0,7—0,9 12,5% 7-10 -
Parus major 1,4— 2,0 119% 8s—10
Parus palustris 1,1—1,4 12,0%, 7—10
Sitta europaea caesia 1,9— 2,3 9,3% 6—8
Emberiza citrinella 209 22,8%, A—-5
Fringilla coelebs 1,7—2,5 19,0%, 4—6
Chloris (heute Carduelis) chloris 1,3—2,6 18,2% 5-6
Passer domesticus 2,2— 3,2 18,5% 4—6
Sturnus vulgaris 5,8—8,0 15,9% 5-6
Oriolus oriolus 6,2— 8,0 124%, 4
Garrulus glandarius 7,0— 10,0 27,78/, 5—6
Pica pica 8,0— 12,0 20,0% 6—7
Corvus coröne 15,0— 23,0 21,0%, 5
Durchschnittliche Schwankung der G um ihren Mittelwert hier = +17%.
Für abnorme Eier gilt als Grenze nach oben das 21/,fache der normalen Größe,
aber schon doppelt große sind sehr selten. Nach unten ist überhaupt keine Grenze
gesetzt bis zur Erbsengröße.
Man sieht, daß die Eigewichte in recht verschiedener Weise um den Mittelwert
schwanken, nämlich um 9—26%, von diesem. Arteigentümlichkeit ist das nur zum
Teil, während es im übrigen davon abhängt, wo man die Grenze zwischen normalen
und abnormen Extremen zieht. Soweit die letzten als solche erkannt wurden, ließen
wir sie grundsätzlich bei allen Variationsangaben immer unberücksichtigt. Über die
Eigewichtsvariation innerhalb des Geleges und über Temperatur- und andere Einflüsse
auf die Eigröße siehe Abschnitt 4e u. 31 IX (Seite 88 u. 74).
f) Schalengewicht (g) der Vogeleier. — /) Allgemeines: Eierbeschreibungen ohne
Schalengewichte sind unvollständig; denn die Eischale ist ein Körper und hat also
Berechnungen für Zwecke der Oologie 37
3 Dimensionen, Länge, Breite und Dicke. Da die Schalendicke (d) nicht ohne Zerstörung
des Eies direkt bestimmt werden kann, nimmt man als Ersatz das Schalengewicht
unter Voraussetzung einer sauberen Entleerung und vollkommenen Austrocknung,
was ja schon für die Erhaltung des Eies in den Sammlungen unbedingt nötig ist. Frisch
ausgeblasene Eier können noch 5—10%, Wasser enthalten und brauchen zum völligen
Austrocknen, auch nach dem Aussaugen auf Fließpapier oder Leinwand, noch mindestens
eine Woche, will man nicht künstliche Mittel anwenden, wie REy es mittels Chlor-
calcium im Vakuum tat. Ob die Bedingungen erfüllt sind, läßt sich mit der Waage
prüfen sowie mittels Durchleuchtung oder Rollenlassen des Eies auf glatter, waage-
rechter Ebene. Aus dem Schalengewicht und den Eidimensionen lassen sich nach
unseren Formeln die Eigewichte, die Schalendicke und das Relative Schalengewicht
(Rg) leicht berechnen. Dadurch ermöglicht das Schalengewicht überhaupt erst manche
Untersuchungen und Erkenntnisse der vergleichenden Oologie, soweit es dazu nicht
schon allein genügt. Über den vielfältigen Nutzen des g wird auf Seite 42 eingehend
berichtet. Deshalb sollte in keiner Eibeschreibung das Schalengewicht fehlen, auch
wenn es für manche unserer Zwecke nicht benötigt wird und in gewissen Fällen so-
gar versagen kann.
Das haben schon vor vielen Jahrzehnten die besten Oologen erkannt und danach
gehandelt, aber die Gewichte nicht weiter oder zu wenig ausgenutzt. So Horrz (1870),
KuTTer (1877, 1880), KuscHEL (1895), Rey (1892, S. 9), GOEBEL & OTTosson (1908),
DoMmEIER (1908), v. ERLANGER (1904) und andere. Im Schrifttum traten REICHENOW
(1899), HARTERT (1903), LEVERKÜHN (1891), REISER (1894) und v. NarHusıus (1882,
S. 130—131) gerade auch für die Notwendigkeit der Gewichte ein. Wenn all’ diese
Forscher nicht recht zur volleren Ausnutzung kamen und andere noch heute die
Wägung unterlassen, so liegt das m. E. im wesentlichen an vier unzureichenden Gründen.
II) Falsche Gründe gegen das Wiegen.
Erstens: Man machte sich rein gefühlsmäßig eine irrige Vorstellung vom Einfluß der
Bohrlochgröße und dem der etwa von Insekten angefressenen Schalenhaut oder be-
hauptete, Schalendefekte schlössen eine zuverlässige Wägung aus. Solche Mängel
sind jedoch meist so gering, daß sie für gewöhnliche Zwecke in der Regel unbeachtet
bleiben können. Wo dies nicht der Fall ist, kann die Rechnung helfen. Da ist am ein-
fachsten:
Ne t.d.. (29)
g Y
wobei der Defekt f mittels eines Millimetermaßstabs als Fläche gemessen wird. Die
Schalendicke d findet man genügend genau in den Listen unsrer Eibeschreibungen,
die spez. Gew. y hier auf Seite 118. Die nachstehende Tabelle 4 gibt eine Vorstellung
von den Größen der nötigen Verbesserungen, für viele Fälle gleich das fertige Resultat
und hilft bei den anderen, die bei so kleinen Zahlen leicht möglichen Dezimalstellen-
fehler zu vermeiden. Oder man rechnet
0
TEE (30)
wobei g, das Gewicht der fehlerhaften Schale, OÖ die Oberfläche des heil gedachten
Eies ist, berechnet nach unseren Formeln (Seite 108— 111).
1. Beispiel: Schalendicke (d) = 0,60 mm, Schalendefekt (f) = 70 mm?, spez. Gew.
2,10 ergibt den Gewichtsverlust (Ag) = 0,088 Gramm = 88 Milligramm. — Beim
spez. Gew. 2,30 wäre Ag = 0,097 Gramm = 97 Milligramm.
2. Beispiel: f = 245 mm?, d = 0,45 mm, y = 2,20. — Für f = 200 und d = 0,40
38 Mathematischer Teil
Tabelle 4. Gewichtsverlust Ag infolge eines Schalendsfekts f
Schalendicke d in mm, Schalendefekt f in mm?. Gewichtsverlust Ag in Gramm = f-d -y (Formel (29))
df>
10 mm? 20 30 40 50 60 70
0,05 | 0,001 | 0,002 | 0,003 | 0,004 | 0,005 | 0,006 | 0,007 0,008 | 0,010 | 0,011
mm | 0,001 0,002 | 0,004 | 0,005 | 0,006 | 0,007 | 0,008 0,0099 | 0,011 | 0,012
— [ln
Pe FE EEE ee” ee
0,004 | 0,008 | 0,013 | 0,017 | 0,021 | 0,025 | 0,030 | 0,034 | 0,038 | 0,042
ER 0,005 | 0,009 | 0,014 | 0,019 | 0,023 | 0,028 | 0,033 | 0,037 | 0,042 | 0,046
0.30 0,006 | 0,013 | 0,019 | 0,025 | 0,032 | 0,038 | 0,044 | 0,050 | 0,057 | 0,063
: 0,007 | 0,014 | 0,021 | 0,028 | 0,035 | 0,041 0,048 | 0,055 | 0,062 | 0,069
0.40 0,008 | 0,017 | 0,025 | 0,034 | 0,042 | 0,050 | 0,059 | 0,067 | 0,076 | 0,084
; 0,009 | 0,018 | 0,028 | 0,037 | 0,046 | 0,055 | 0,064 | 0,074 | 0,083 | 0,092 \
0.50 0.011 | 0,021 0,032 | 0,042 | 0,053 | 0,063 | 0,073 | 0,084 | 0,095 | 0,105
0.70 0,015 | 0,029 | 0,044 | 0,059 | 0,074 | 0,088 | 0,103 | 0,118 | 0,133 | 0,147
/ 0,016 | 0,032 | 0,048 | 0,065 | 0,081 0,097 | 0,113 0,129 | 0,145 | 0,161
0.80 0,017 | 0,034 | 0,050 | 0,067 | 0,084 | 0,101 0,118 | 0,134 | 0,151 | 0,168
i 0,018 | 0,037 | 0,055 | 0,074 | 0,092 | 0,110 | 0,129 | 0,147 0,166 | 0.184
0.90 0,019 | 0,038 | 0,057 | 0,076 | 0,095 | 0,113 | 0,132 | 0,151 0,169 | 0,189
: 0,021 0,041 0,062 | 0,0832) 0,104 | 0,124 | 0,145 0,166 | 0,189 | 0,207
1.00 0,021 0,042 | 0,063 | 0,084 | 0,105 | 0,126 | 0,147 | 0,168 | 0,189 | 0,210
0,023 | 0,046 | 0,069 | 0,092 | 0,115 | 0,138 | 0,161 0,184 | 0,207 | 0,230
In jedem Fach entspricht die obere Zahl (Ag) dem spez. Gew. 2,10, die untere dem spez. Gew. 2,30.
wird Ag = 0,176, für {= 45 zusätzlich 0,038, zusammen 0,214. Entsprechend für
d = 0,50 : 0,220 + 0,050 = 0,270. Resultat: 1/2 (0,214 + 0,270) — 0,242 Gramm
— Ag. Die Interpolation ist also etwas umständlich, und für in der Tafel nicht di-
rekt gegebene Fälle ist meist die einfache Multiplikation der 3 Argumente f, d und y die
beste Methode. Für überschlägliche Ermittelung behält die Tabelle ihren Wert.
In Tabelle 5 geben wir einige Beispiele für die Geringfügigkeit des Bohrlocheinflusses
auf das Schalengewicht, ausgedrückt in Gramm, wie alle Gewichtsangaben in unsern
Listen.
Ag=rr-d-y (31)
Bohrlöcher über 2,5 mm sind ungewöhnlich.
Für gewöhnliche Zwecke bedeutungslos ist auch der minimale Kalkverlust der Schale
infolge der Bebrütung.
Ebenso unwesentlich sind Defekte der Schalenhaut. Eine solche wiegt getrocknet
z.B. beim Haushuhn (Gallus gallus domesticus) 0,2—0,3 g, so daß es ohne nennens-
E
s
Berechnungen für Zwecke der Oologie 39
werten Einfluß bleibt, wenn davon ein kleiner Teil etwaigem Insektenfraß zum Opfer
fiel. Bei größeren Eiern mit schwererer Schalenhaut erscheinen solche Verluste gegen-
über dem entsprechend größeren Eigewicht für unsre Belange bedeutungslos.
Zweitens: Die zu den angedeuteten Zwecken nötigen Formeln, die in diesem Buch
. gegeben werden, lagen bisher nicht vor; manche Leute rechnen ja nicht gern. Ohne
das geht es nun aber wirklich nicht.
Drittens: Manche wurden wohl durch die ganz verkehrte, abfällige Kritik von G.
Krause (1900 und 1911) abgeschreckt, weil sie ihr ungeprüft glaubten. Diese Kritik
wollen wir aber einmal näher betrachten. In seiner Arbeit von 1911 gibt Krause
an, daß er 20000 Eier gewogen hat und daß dabei Arbeit und Erfolg in keinem ge-
sunden Verhältnis gestanden haben. Er hat eben keine Nutzanwendungen gebracht,
sondern Fehler gemacht. Daher wohl habe ich in den beiden genannten Arbeiten
keine richtigen allgemeinen Ergebnisse KrAuses finden können.
Tabelle 5. Bohrlocheinfluß auf das Schalengewicht
Schalen- Gewichtsverlust Ag Ag
gewicht in Gramm bei
Bohrlochdurchmesser — 2r
A ee Gramm 11mm 2,5 mm 5mm 10 mm 5mm
Aegithalos c. caudatus 0,050 0,0001 0,0006 0,002 _ —_
Emberiza c. citrinella 0,125 0,0001 0,0008 0,003 0,013 —
Corvus c. corone 1435 0,0003 0,0018 0,007 0,028 0,52%
Buteo b. buteo 4,57 0,0005 0,0033 0,013 0,053 0,29%
Anser a. anser 20,92 0,0012 0,0074 0,029 0,116 0,14%
Cygnus olor 35,32 0,0014 0,0085 0,034 0,136 0,10%
Struthio c. camelus 289,0 0,0036 0,0224 0,089 ‘ 0,357 0,03%
Bohrlöcher über 2,5 mm sind ungewöhnlich.
1900 (S. 303) sagt er in seiner Arbeit ‚„Aepyornis-Eier‘“: ‚Sehen wir uns doch nur
einmal die in dieser Beziehung höchst lehrreiche Gewichtsspalte der Tabelle an, da
werden wir finden, daß Untersuchungen nach jener Richtung hin völlig unmöglich
wurden. Da zeigen große Eier kleine Gewichte und umgekehrt, ganz wie es die Ver-
schiedenheit der Einlagerungsverhältnisse mit sich brachte‘‘. — Mit diesen hier praktisch
einflußlosen Einlagerungsverhältnissen haben aber die Unstimmigkeiten gar nichts
zu tun, und das bloße Wägen der Eier brinst an sich natürlich ebensowenig Nutzen,
wie das Messen an sich. Man muß mit den Resultaten auch etwas tun, die Ergebnisse
der rein mechanischen Vorarbeit denkend auswerten. Krause kann natürlich nichts
für die Messungsfehler seiner Gewährsleute, die ihm zu 11 seiner 12 Aepyornis-Eier
für die beiden Achsen, die beiden Umfänge und das Schalengewicht Angaben machten.
Aber die Widersprüche in diesen Angaben hätte er bei seiner 30jährigen reichen Er-
fahrung aufklären müssen, da doch die übersichtlich nebeneinander gestellten Achsen-,
Umfang- und Gewichtsangaben m. E. geradezu zum Erkennen und zur Untersuchung
der Widersprüche reizen. Die Kenntnis der Beziehung zwischen Kreisumfang und
Durchmesser (x — 3,1416) hätte ihn seine Achsenfehler von 22 und 53 mm für die beiden
St. Omer-Eier nicht übersehen lassen, auch nicht, daß sein größtes Ei unmöglich
viel weniger wiegen kann als die allerkleinsten. Dieses Ei ist mit seinen angeblich
nur 1,210 kg um über 2,1 kg zu leicht angegeben, wie ich durch Nachrechnung fand,
dann durch Nachwägen im British Museum (Natural History), London, feststellen ließ.
Auch geben seine „absolut genauen‘‘ Abbildungen eine ungenaue Vorstellung, weil
sie zum Teil statt ovaler Eier elliptische zeigen und Bild 8 um 33% zu schmal ist,
40 Mathematischer Teil
r
da seinem kleinen Umfang von 670 mm eine Breitenachse von 213 mm entspricht,
nicht, wie angegeben, 160 mm. Sein leichtestes Ei ist also in Wirklichkeit das über-
ragend schwerste in unserer Reihe von 26 Aepyornis-Eiern. Schon eine bloß überschläg-
liche Berechnung der Schalendicken hätte den großen Gewichtsunterschied als einen
Fehler erkennen lassen. Denn statt wirklich beinahe 6 mm Schalenstärke würde dieses-
Riesenei nach KrAuses Gewichtsangabe 2 mm gehabt haben und wegen des ursprüng-
lichen Gewichts von über 12kg nicht so völlig intakt geblieben, sondern geborsten
sein unter der Last des eigenen Gewichts.
In seiner Arbeit (1911,S.4) verspottet Krause die Gewichtsermittelungen als „typische
Verlegenheitsmittelchen, dem die in der Oologie allgegenwärtige Variabilität einen
dicken Strich durch die Rechnung‘‘ macht. Das hat manchen Oologen und Nicht-
oologen beeindruckt und die wichtigen Wägungen und Berechnungen in Mißkredit
gebracht, unverdienterweise, denn das gerade Gegenteil ist richtig, wie unser Buch
beweist (siehe insbesondere den unten folgenden Abschnitt über die Nützlichkeit
der Gewichtsangaben, Seite 42). Man hat hier ja nur ein Beispiel für die nicht gerade
seltene Anmaßung, daß das, was man aus Mangel an Kenntnissen und Erfahrung
nicht kennt oder nicht versteht oder nicht kann, abfällig kritisiert, für nutzlos oder
gar falsch erklärt wird. Und dann: selbstverständlich iieber gar keine Gewichte als
falsche. Übrigens blieb Krauszs hervorragendes Eiertafelwerk (1905— 1913) unvollendet.
III) Berichtigung falscher Gewichtsangaben. Was soll man sagen zu den unerklärlich
falschen Wägungen der richtig gemessenen Eischalen der wertvollen Hawrtzschschen
Ausbeute vom Baffinland (Hesse 1915)? Angeregt durch die unsinrigen Zahlen, prüfte
ich alle im Berliner Museum nach. Die Beispiele mögen sprechen. Angegeben wurden
die Schalengewichte dort für
Lagopus mutus rupestris 1,97— 2,05 g; richtig ist 1,33—1,70 g;
Sterna paradisaea 1,63—1,77 g; richtig ist 0,85—1,15 g;
Larus argentatus smithsonianus 8,30— 9,40 g; richtig ist 5,40— 6,25 g;
Erolia fuscicollis 0,77—0,86 g; richtig ist 0,41—0,48 g;
Erolia alpina sakhalina (,„‚pacifica‘‘) 1,01—1,02; richtig ist für beide Stücke 0,48 g.
Diese sind bezeichnet (aber nicht von HANTzscH signiert) als Nr. 10622, und sie messen
36,1 x 24,4 und 37,0 x 23,7 mm. Die Art ist nicht in HawtzscHs Bälgeliste aufgeführt.
Die Eier könnten m. E. vielleicht zu E. fuscicollis gehören.
Clangula hyemalis 3,64—4,70 g; richtig ist 2,33—3,90 g;
Phalaropus fulicarius 0,63—0,65 g; richtig ist 0,35 —0,55 g;
Plectrophenax nivalis 0,30 — 0,03; richtig ist 0,150—0,195 g;
Calcarius lapponicus 0,20—0,28 g; richtig ist 0,14—0,16 g.
Es handelt sich bei diesen meinen Berichtigungen lediglich um numerierte Eier,
die danach und nach den Maßen identifiziert werden konnten. Auch ist jedes einzelne
Ei falsch gewogen, nicht nur sind es die oben aufgeführten Grenzwerte. Wer mit der-
artigen Zahlen arbeitet, rechnet oder vergleicht, muß allerdings bei einer solchen,
in diesem Ausmaß gar nicht bestehenden Variation alle Hoffnung aufgeben, mittels
der Schalengewichte irgend etwas erreichen zu können. Das liegt jedoch nicht an
den Schalengewichten.
Der Berichtigung bedürfen z. B. auch folgende Fälle bei Vögeln Ägyptens (KoEsıG
1924):
Prinia g. gracilis (0,03 g), richtig 0,060 g (0,03 g ist 19mal angegeben) ;
Prinia gracilis deltae (0,03 g), richtig 0,060 g (0,03 g ist 10mal angegeben);
Turdoides fulvus acaciae (0,14—0,17 g), richtig 0,225 g:
Oenanthe l. leucopyga (0,12—0,13 g), richtig 0,165 g:
Berechnung für Zwecke der Oologie ‚4
Motacilla flava pygmaea (0,05 g), richtig 0,100 g;
Galerida cristata maculata (0,1 g), richtig 0,170 g;
Galerida eristata altirostris (0,1 g), richtig 0,170 g;
Ammomanes deserti isabellinus (0,05 g), richtig 0,158 g.
Ebenso u. a. die G-Angaben bei GRoEBBELS (1937, allein auf Seite 149) für Uria aalge
(dort ‚„troille‘‘), Brachyramphus hypoleucus und craveri wie auch für Oceanites oceanicus
und Fregetia tropica melanogaster.
Bei HEmRoTH (1922): Daption capensis 37 g (statt richtig 60 g), Sterna anaethetus
34 5 (statt 25,4 g), Ardea goliath 95 g (statt 109 g), Branta leucopsis 92 g (statt 107 g).
Die Durehsehnittswerte der Schalengewiehte in verschiedenen Serien sind für jede
Art und Rasse ziemlich gleiche Zahlen. Nicht für alle, aber für viele Arten ist das
g charakteristisch und daher ein unentbehrliches Kriterium, zuweilen allein für sich
schon, mindestens aber in Verbindung mit den Dimensionen und anderen Anhalts-
punkten. Davon wird noch zu reden sein (im Allgemeinen Teil) bei der Behandlung
der Frage: Kann man Vogeleier bestimmen? Ohne ein wenig Rechnerei geht es dabei
freilich nicht ab.
Ein vierter und letzter Grund für die Abneigung der Sammler gegen die Schalen-
gewichte ist wohl die Scheu mancher vor dem Wägen an sich, weil sie meinen, dazu
gehöre eine feine chemische Wage für teures Geld, das mühevolle mehrmalige Zu-
und Ablegen kleinster Gewichtsplättchen und das lange Warten auf das Einspielen
eines so empfindlichen Geräts. Ein solches ist aber gar nicht erforderlich. Die kleine, sog.
Schweizer Apothekerwaage mit 18cm Balkenlänge, die früher 15 Mark kostete, gibt
selbst noch 1-2 mg an. Sie benötigt wegen ihres 0,500 g schweren Laufgewichts
für die Wägungen von 0,5 bis 1,0 Gramm als kleinsten Gewichtsstein nur ein Plättchen
vom selben Gewicht (0,500 g). Alle Gewichte unter 0,500 g liest man ohne Gewichts-
stein direkt an der Teilung des Waagebalkens ab, was noch die Schätzung der Milli-
gramm gestattet, wenn man solche überhaupt braucht. Selbst diese sind noch genauer
zu erhalten durch Anbringung eines kleinen Gradbogens für die einem Hundertstel
Gramm entsprechende Neigung des Waagebalkens, beiderseits in je zehn Teile ein-
geteilt, wobei also die Reibung in der Pfanne die Stelle feiner Gewichtssteinchen vertritt,
nachdem der Index des Laufgewichts scharf auf den nächsten oder vorhergehenden
Hundertstelgramm-Strich eingestellt war. Das alles ist viel einfacher und schnelle ; zu
handhaben, als diese Beschreibung vermuten läßt, mindestens zehnmal so schnell
wie bei Benutzung einer feineren chemischen Waage, und für unsere Zwecke aus-
reichend genau, überdies bei einiger Vorsicht anwendbar für alle Eier, mit Ausnahme
der Straußeneier (Struthio). — Mehr als vier zuverlässige Ziffern erhalten wir nicht,
auch bei den Eimaßen nicht. Meist genügen drei. Wir schreiben gewöhnlich also z. B.
0,153 g oder 7,65 g oder 60,5 g und 254 g, aber besser und weil leicht erhältlich wenig-
stens bis zu eihigen 50 g zwei Dezimalen, in unsicheren Fällen weniger. Was darüber
hinausgeht, täuscht hier eine Genauigkeit vor, die garnicht vorhanden und für unsere
Zwecke auch nicht nötig ist. Jedoch nicht z. B. nur 0,1g, wie ein bekannter Oologe
es tat und sich dann über die Konstanz so kleiner Schalengewichte wunderte, die er
durch Weglassung der unterscheidenden weiteren Dezimalen selbst erst erzeugt hatte.
— Soviel zur Abwehr der Einwände gegen die Wägung der Eischalen.
IV) Variation der Schalengewichte. In unseren Maßlisten wurden für die meisten Arten
und Rassen sowohl die durchschnittlichen als auch die extremen Schalengewichte
angegeben. Wo diese fehlen, weil keine direkten Wägungen vorlagen, können sie nach
unseren Formeln berechnet werden oder in geeigneten Fällen aus Analogie mit den
g nahestehender, ungefähr gleichgroßer Arten geschlossen werden. Denn das Schalen-
gewicht g ist innerhalb der Art und bei ihr nahestehenden Arten in der Regel propor-
tional der Oberfläche, hier charakterisiert durch das Produkt A - B. Ausnahmen kann
42 Mathematischer Teil
man auf S. 89—91 herausfinden bei Pluvialis, Athene, Strix, Sylvia, Sitta, Passer, Corvus,
wo das größte g nicht immer zum größten G gehört, also die Proportion gestört ist.
— Mittels der bekannten Achsen A und B und des bekannten Schalengewichts g ergibt
sich das unbekannte g, aus den bekannten Achsen A, und B, als guter Näherungs-
wert, eine Möglichkeit, die freilich g-Angaben für ähnlich große Eier benötigt.
EB
5: > A-B &-
(32)
V) Berechnung der Schalengewichte (g) und der Schalenvolumina (V,). Da das Schalen-
gewicht gewöhnlich direkt gewogen werden kann, wird eine Berechnung nur aus-
nahmsweise nötig sein, z.B. zur Berechnung des Einflusses von Schalendefekten.
Weil wir aber aus ihm Schlüsse ziehen wollen auf die Schalendicke und anderes, setzen
wir die Formeln hierher: Schalengewicht = Oberfläche mal Schalendicke mal spez. Gew.
oder auch Eigewicht mal Relativem Schalengewicht.
gs—=0-d-y=(B-d)%-K-ce-d-y=G-Rg. (33)
Einzelheiten über die Variation der d und über O sowie über die y bieten die folgenden
Abschnitte 4, 6 und 8 (S. 87— 95, 108— 111 u. 116— 119).
Durch Weglassung des spez. Gew. y in obigen Formeln ergeben sich die für das
Volumen der Eischale |
v=0-.d=(B-d)-K-c-d. (34a)
Das d in der Klammer kann immer wegbleiben, außer bei den dicksten Eischalen.
— In dem freilich seltenen Fall, daß das spez. Gew. genau bekannt ist, kann man
auch rechnen
Vv=2. (34b)
Wenn ein ganz roher Näherungswert genügt, ist V, = 0,5 g, da y immer ungefähr — 2
NT:
VI) Über die Nützlichkeit der Schalengewichtsangaben. Die von mir (SCHÖNWETTER 1925)
wohl erstmalig bewirkten Berechnungen des Frischvollgewichts (G) und der Schalen-
dicke (d) sind während der Weiterarbeit fruchtbarer geworden, als ich damals ahnte.
Zunächst gelang es, aus den leeren Schalen durch die ja leicht mögliche Messung der
Eiachsen und durch Wägung genau festzustellen, wieviel das Ei im völlig frischen
Zustand gewogen hatte, auch wenn man die Objekte gar nicht in Händen hatte, sondern
nur ihre Dimensionen, ihre Gestalt und ihr Gewicht etwa aus dem Schrifttum kannte.
Da die vergleichende Oologie vor allem mit Durchschnittsmaßen arbeiten muß, kam der
große Vorteil hinzu, aus solchen in beliebig großem Umfang, je nach der Menge der zur
Verfügung stehenden Unterlagen mittels nur einer Rechnung gleich den Durchschnitt
aus vielen Eiern zu erhalten, Werte, die auf anderem Wege, wenn überhaupt, erst nach
jahrelanger Bemühung hätten erlangt werden können. Dabei spielte es keine Rolle,
ob die Eier seinerzeit frisch gewesen oder bebrütet, ob sie große Luftblasen enthielten
oder schadhaft waren, was die Wasserfüllungsmethoden anzuwenden nicht gestattet
hätte. Etwaige Defekte konnten nun rechnerisch berücksichtigt werden, alles nicht
immer reinmathematisch streng, aber in guter Näherung. So ergaben sich u. a. folgende
Resultate, teils unmittelbar aus dem Schalengewicht g, teils aus dem daraus abge-
leiteten relativen Schalengewicht Rg und der Schalendicke d, die beide berechnet
werden konnten:
1. Durch die Angabe der d wurden die verschwommenen, oft falsch angegebenen
Eigenschaften „‚dickschalig‘‘ und ‚„dünnschalig‘‘ exakt festgestellt.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 43
2. Dadurch wieder konnte ermittelt werden, ob Höhlenbrüter wirklich dünnere und
Nestflüchter dickere Eischalen besitzen oder nicht, worüber hier in besonderen Ab-
schnitten berichtet wird (Seite 54). Die Regel stimmt z. B. nicht bei Aegotheles als
Höhlenbrüter mit auffallend dicken Schalen und seinem nahen, offen brütenden Ver-
wandten Podargus mit dünnen. Ähnlich bei dem Schwarzspecht Dryocopus martius
und dem großen „Ziegenmelker‘“ Eurostopodus guttatus, dieser am Boden nestlos, jener
in tiefer Baumhöhle brütend, beide auf gleichgroßen Eiern mit fast gleichdünnen
Schalen. Lophodytes cucullatus wurde als die Art mit der relativ stärksten Schale unter
allen Höhlenbrütern überhaupt erkannt (Rg —= 15,3%). Absolut stärkste Schale bei
Aepyornis (bis 5 mm), absolut schwächste (1/33 mm) bei kleinen Kolibris (Trochilidae).
3. Die uns geglückte Berechnung der Schalendicken d oder des relativen Schalen-
gewichts Rg aus den g deckte viele Unregelmäßigkeiten in dem Verhältnis zwischen der
Eigröße G und dem Schalengewicht g auf, die im Abschnitt 3 g) dargelegt sind (S. 45).
4. Betreffs der Kuckuckseier (Cuculidae) ließ sich feststellen, daß der größere Wider-
stand beim Anbohren der Schale lediglich auf der größeren Schalendicke beruht, nicht
auf größerer Härte, die gar nicht vorliegt, und auch nicht auf dem höheren spez. Gew.
5. Bei der Nachprüfung oder Bestimmung von Eiern leistet g vortreffliche Dienste,
wenn das nötige Vergleichsmaterial zur Hand ist, das dieses Buch erstmalig bietet.
Viele Fehler in den Sammiungen konnten mittels des Schalengewichts aufgeklärt
werden, ohne das sich selbst gute Kenner gelegentlich täuschen ließen. KrÜPEr hielt
(nach Sammlung Schönwetter? Hrsg.) kleine Eier von Gyps und Haliaeetus für solche
von Circaetus, die sich im Aussehen freilich alle sehr nahe kommen. NEHRKORN (1910,
S. 236) bestimmte Creatophora als Oenanthe pileata, Sturnus malabaricus nemoricola als
Prunella collaris u. a. mehr. Alle trennbar durch die verschiedenen Schalendicken oder
die Rg, oft schon durch das Schalengewicht allein. So bei der Entlarvung des berühmten
blauen Barbatula- = Pogoniulus-Eies Nehrkorns, das recte Euplecies zugehört (Bd. I,
S. 725), des falschen Eies von Urodynamis taitensis im Britischen Museum, vieler Haus-
huhnzwergeier (Gallus gallus domesticus) u. a. Aber man wog ja nicht.
6. Irrige Angaben in der Literatur sind im Teil A dieses Handbuchs berichtigt durch
Nachrechnung, diese direkt geprüft an Scherben. Zum Beispiel gibt Kornıc (1932, S. 90)
für 2 Eier des Flamingos (Phoenicopterus antiguorum) die Schalendicke zu 2 mm an bei
89,5 x 58 mm = 18,15 g. Ein paar Griffe am Rechenschieber beweisen, daß diese Stücke
nur 0,65 mm dick sein können, wie schon der Durchschnitt von über 100 Eiern nur
0,67 mm ergibt. Sie variieren auch nicht „bis 3 mm“, müßten ja sonst 4,5mal so schwer
sein. Schon d = 1 mm ist für diese Art sehr hoch. — GODELMANN (1904, S. 44) notiert für
Struthio dA=3mm (statt 1,7—2,1mm bei den einzelnen Struthio camelus-Rassen),
CLeviscH (1913, S. 40) für @yps 0,42 mm (statt 0,67 mm für @. f. fulvus), für Pinguinus
impennis (S.41) 0,56mm (statt 0,68—0,95 mm), für Larus ichthyaetus (S.41) 0,17 mm
(statt 0,36 mm), wohl richtig gemessen, aber am unrichtig bestimmten Objekt.
7. Für die Bestimmung von Eischerben aus alten Höhlen- und Gräberfunden, von
mir in mehreren Fällen durchgeführt, sowie von subfossilen Arten bietet die Schalen-
dicke neben den Poren fast den einzigen Anhalt, da Korn und Färbung verwittert
sind und auch die Eigröße oft nicht direkt zu ermitteln ist. Es fehlten aber die nötigen
Vergleichswerte, vor allem die Schalendicke d, die erst von uns gegeben wird.
8. Innerhalb der Familie können mittels der aus dem Schalengewicht berechneten
Schalendicken kleine Eier größerer Arten von ähnlichen großen Eiern kleinerer Arten
unterschieden werden.
9. Bei der Berechnung der d aus den g ergab sich, daß Arten mit relativ sehr großen
44 Mathematischer Teil
Eiern in der Regel auffallend dünne Schalen erzeugen, z. B. Apteryx, Megapodiidae,
Scolopacidae, im Gegensatz zur Erwartung.
10. Auf dem Weg über das ausgemittelte Rg wurde als neu festgestellt, daß normaler-
weise die Eischale größerer Vögel nicht nur, wie selbstverständlich, absolut dicker ist,
sondern auch relativ. Rg wächst mit der Eigröße.
11. Die Angabe der Schalengewichte g ermöglicht, nach unsern Formeln das spez.
Gew. y der Eischale auf trockenem Wege zu ermitteln, ebenso das spez. Gew. /’' des Eies
auf einfachste Art mittels des aus dem Schalengewicht abgeleiteten relativen Schalen-
gewichts Rg.
12. Die Diekenberechnungen für die Zwerg- und Rieseneier brachten uns die neue
Erkenntnis, daß in 400 untersuchten Fällen der Durehschnitt bei jeder Art Zwerg- und
Rieseneier die (nicht relativ, sondern absolut) gleiche Schalendicke besitzt wie die
normalen Eier. Im Einzelfall gilt das wegen der Variation natürlich nicht immer. Nimmt
man aber mehrere Fälle zusammen, so zeigt sich die Tendenz, die bei großer Anzahl zur
Evidenz wird. Also: Bei Änderung der Eigröße bleibt die Schalendieke grundsätzlich
unverändert erhalten, sie hinkt nach. Hat sie sich mehr oder weniger bei einer Sub-
species geändert, so erscheinen mir Schlußfolgerungen auf Dauer und Richtung der
Entwicklung der Rassen möglich. — Auf mehrere solche Fälle wurde im Systematischen
Teil A hingewiesen mit der gleichen Vermutung, z. B. bei Alectoris rufa laubmanni.
Nach PETERS (1934, S. 66) ist diese Rasse lediglich die auf die Balearen introduzierte
A.r. rufa. Die Vögel blieben im Aussehen und in der Größe im wesentlichen wie zuvor,
aber die bis jetzt vorliegenden 54 Eier von laubmanni sind im Durchschnitt um 25%
kleiner (20,1 g: 16,3 g). Die Schalendicke blieb unverändert 0,283 mm! Die natürliche
Änderung der Schalendicken bedarf einer langen Zeit, einer viel längeren, als die Ände-
rung im Aussehen des Vogels nach Färbung und Größe und als die Anpassung an andere
Umweltbedingungen (Bd. I, S. 228— 229).
g) Relatives Schalengewicht (Rg). — /) Allgemeines. Wenngleich im allgemeinen
größere Eier absolut und auch relativ dickere Schalen besitzen, wie das als selbst-
verständlich erscheint, erweist sich bei näherem Hinsehen das Verhältnis zwischen der
Eigröße und dem Gewicht der Eischale so stark veränderlich und unregelmäßig, daß es
zu einer eingehenden Untersuchung reizt. Zu diesem Zweck berechnen wir das ‚relative
Schalengewicht‘“ — Rg und verstehen unter diesem Begriff den prozentualen Anteil der
trockenen Eischale am Gewicht des frischvollen Eies durchschnittlicher Größe:
Rg = 10g:G. (35)
Es ist dies eine sehr empfindliche Charakteristik, welche die Unterschiede noch deutlicher
herausarbeitet, als es dem absoluten Schalengewicht (g) und der Schalendicke (d)
möglich ist. Wo nicht anderes ersichtlich, ist unter Rg immer das durehsehnittliche
relative Schalengewicht gemeint wie analog bei allen unseren oologischen Begriffen, so
d, G, y, T u.a. Einem großen Rg entsprechen relativ dicke Schalen, einem kleinen
relativ dünne. Überblicken wir die ganze Avifauna, so variiert Rg zwischen 4%, bei
kleinen Kolibris (Trochilidae) und 29,0%, bei einem Aepyornis und einem Francolinus.
Im Gesamtdurehsehnitt aller über 9000 Arten und Unterarten ist Rg — 8°, ganz wie
auch RG. Schon hier stoßen wir auf Unregelmäßigkeiten.
Bei den Hühnervögeln (Galliformes) z. B. ergeben sich als Rg im Familiendurchschnitt
bei den Megapodiidae (31 Formen) 7,15%, bei den Craeidae (41 Formen) 11,53%, bei den
Tetraonidae (32 Formen) 7,98°%,, bei den Phasianidae (217 Formen) 10,10%, bei den
Numididae (13 Formen) 15,24%, bei den Meleagrididae (4 Formen) 9,75%. Die größte
Alectoris-Form hat 9,1%, die 18 anderen haben 11%, (9,6— 12°). Die zuweilen äußerlich
recht ähnlichen, gleichgroßen Eier der Rabenvögel Coloeus (jetzt zu Corvus gerechnet),
Pu 0 ee
Berechnungen für Zwecke der Oologie 45
Pica, Nucifraga zeigen 6,7%, (9,8—7,1%), 5,9% (3;7—6,4%), 5,8% (35,4—6,0%,) nach
4 bzw. 12 bzw. 4 Werten.
Die 190 Formen der Pieidae als ausgesprochene Höhlenbrüter haben Rg — 6,98%,
(35,0— 8,8%), die 89 Arten und Rassen der nestlosen Caprimulgidae wider Erwarten nur
6,69%, (5,4—8,0%), also im wesentlichen gleichdicke Schalen! Aus unsern Maßlisten,
in denen die durchschnittlichen Rg für alle Arten und Unterarten angegeben sind, für
die Schalengewichte (g) vorlagen, ist zu ersehen, daß ganz niedrige Rg nicht nur bei
kleinsten Arten, sondern auch bei viel größeren vorkommen, z. B. nur 4,5%, bei der
Spottdrossel Allenia, beim Mornell (Eudromias morinellus) und bei einer ganzen Reihe
von Schnepfenvögeln (Scolopacidae). Bei 41% der Scolopacidae mit gegebenem Rg liegt
dieses nur zwischen 4,5 u. 5,0%. Der genannte Höchstsatz wird nicht etwa auch bei den
Straußen (Struthionidae) erreicht, sondern nur noch bei relativ kleinen afrikanischen
Frankolinen, wo er im Einzelfall selbst bis auf 30%, ansteigen kann (bei einem Franco-
linus sephaena grantiı in der Sammlung Schönwetter). Bei diesen handelt es sich auch
noch insofern um ein besonderes Problem, als die eine Hälfte der Francolinus-Arten die
überhaupt höchsten Rg aufweist. (19—29°%,, Mittel 22,2%,), wogegen die andre Hälfte
ein auffallend niedrigeres hat (5,4—11,3%, Mittel 10,0%). Dieser Gegensatz tritt sogar
innerhalb der Art auf: Francolinus hildebrandti fischeri 19%, aber h.groter 8,4%.
Pternistis afer afer 9,5%, a. humboldtii 10,9%, aber a. boehmi 19,0%, a. leucoparaeus
19,4%, a. cranchii 22,1°%,. Bei den eurasischen Frankolinen fehlen so dickschalige Eier
vollkommen, sie haben nur Rg — 8,7— 11,4%, Mittel 10,2%.
Beispiele für die Variation des Rg in einigen Familien werden nachstehend in der
Hoffnung geboten, daß sich einmal jemand findet, der die hier vorliegenden merk-
würdigen Verhältnisse genauer untersucht und interpretiert. Denn die mit der Eigröße
teils steigende, teils fallende Tendenz in der Variation der Rg ist sicherlich nicht be-
deutungslos, eine Erklärung dafür aber noch nicht gefunden. Auch die Bedeutung der
Schalendicke, die ja mit dem Rg in Zusammenhang steht, verdient nähere Unter-
suchung. Meines Erachtens sind interessante Resultate zu erwarten, zu denen wir nur
einen Teil der erforderlichen Unterlagen als Vorarbeit beisteuern können, nämlich außer
den in den systematischen Listen mitgeteilten Rg und d nur die folgenden Zusammen-
stellungen aus durchschnittlichen Rg, die kritisch betrachtet sein wollen. Sehr be-
achtenswert erscheinen u. a. die teils hohen, teils niedrigen Rg bei den Ploceiden und
Frankolinen sowie der Widerspruch bei Podargus und Aegotheles.
II) Abhängigkeit der Rg von der Eigröße. Schlußfolgerungen aus den Rg wollen aber
mit. Vorsicht gezogen werden, da streng genommen nur gleichgroße Eier in dieser
Hinsicht ohne weiteres vergleichbar sind, weil trotz der Division mit G das Rg von der
Eigröße abhängig bleibt, wie folgende Überlegung zeigt.
ee B2.Rre der (36)
G = 0,5420AB2 + 0,30. (21)
Da g durchschnittlich 8% des Eigewichts ist (g = 0,08 G), läßt sich 0,5 g durch 0,04 G
ersetzen. Statt dieses in der G-Formel zu addieren, multiplizieren wir den Faktor 0,542
mit 1,04 und erhalten
B eknerden sa Kserder nn Bere
STE wosegAB TT0564A 0560B.k
(da.A- BE) 769
Das Verbleiben der A bzw. B in diesen Formeln beweist die in Rede stehende Ab-
hängigkeit.
Bei ungleich großen Eiern mit demselben Rg kann gemäß den Formeln die Gleichheit
sowohl auf einer entsprechenden spezifischen Verschiedenheit der Schalen, in der Ei-
SR
2 EZ %
46 Mathematischer Teil 7 RR A
gestalt, der Schalendicke und dem spez. Gew., als auch allein schon auf ihren ver- N
schiedenen Größen beruhen, nämlich wenn diese proportional den Schalendicken sind, 2
oder auf beiden Ursachen zugleich. — Selbstverständlich wird man nach den Formeln
nur diejenigen Werte berechnen, die im gegebenen Fall nicht direkt durch Wägung
ermittelt werden können. Für die Rg unsrer Listen sind die g direkt gewogen, die G
aber berechnet, da G zuvor praktisch unbekannt ist. Gelegentlich können die Rg bei
der Prüfung unsicherer Bestimmungen nützen (vgl. Abschnitt 5). Das mir
einmal gestellte Ansinnen, den Einfluß der Eigröße (G) auf Rg zu eliminieren, ist daher
unmöglich zu erfüllen, als ein Widerspruch in sich, wie ja schon aus der Definition des ;
Rg ohne weiteres folgt. Die Eiachse A bzw. B beeinflußt also das Rg nach wie vor. |
Betrachten wir zunächst eine Reihe verschiedener Eigewichte vom kleinsten bis zum
größten Vogel zusammen mit den relativen Schalengewichten, so zeigt sich die Regel,
daß im allgemeinen dem kleineren Ei ein niedrigeres Rg zukommt, dem größeren Ei ein
höheres. Es bedarf also ein größeres Ei nicht nur einer diekeren Schale überhaupt,
sondern auch eines größeren Anteils seiner Schale am Eigewicht, um dem Druck seines
eigenen Gewichts und dem des brütenden Vogels widerstehen zu können, also aus
mechanischen Gründen.
Se G “Bes
Kolibri D,78::4-% Uhu 76 8...92%%
(Ramphodon naevius u. (Bubo bubo)
Colibri coruscans)
Goldhähnchen 032 9: Steinadler 142g 10 %
(Regulus regulus) (Aquila chrysaetos)
Hausrotschwanz 2,2g 5,2% Höckerschwan 340g 11,5%
(Phoenicurus ochruros (C’ygnus olor)
gibraltariensis)
Amsel 7,2g 5,6% Nandu 519g 12,8%
(Turdus m. merula) (Rhea a. americana)
Dohle 1 Baby aaa DA Strauß 1640g 18 %
(Corvus monedula) (Struthio camelus)
Wanderfalke 48 & A Aepyornis 8500g 207%
(Falco peregrinus)
Im einzelnen ergibt sich dann aber oft ein anderes Bild mit vielen Unregelmäßigkeiten
bei sonst normalen Eiern. — Zwergeier haben regelmäßig ein höheres als das normale Rg,
Rieseneier meist ein niedrigeres (vgl. S. 100).
III) Beispiele für die Unregelmäßigkeit der Rg
1. Große Eier mit kleinem Rg: Apteryx oweni (285g) hat Rg = 6,4%. Diomedea
exulans (455 g) hat 8,0%. Procellaria aequinoctialis (120 g) hat 6,9%. Numenius arquata
(76 g) hat 6,3%. Rhynochetus jubatus (72,5 g) hat 5,7%,. Eurypyga helias (28,5 g) hat
5,1%. Eudromias morinellus (17,0 g) nur 4,5%.
2. Kleine Eier mit großem Rg: Francolinus sephaena coqui (16,1g) hat 29,0%.
Aegotheles cristatus leucogaster (8,7 g) hat 10,9%. Euplectes o. orix (2,0 g) hat 10,5%.
Quelea quelea (1,78 g) hat 9,5%. Sasia abnormis (1,36 g) hat 8,1%. Picumnus i. innomi-
natus (1,18 g) hat 8,0%.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 47
3. Beispiele für wachsendes Rg bei zunehmendem 6 innerhalb der Familie (der Regel-
fall): Gaviidae: Gavia stellata (83 g) 8,1%. — G.arctica pacifica (95 g) 8,4%. — G.a.
arctica (122 g) 8,9%. — @. adamsii (160 g) 10,0%. — G. immer (167 g) 10,8%. Verlauf
also ziemlich stetig.
Apodidae: Collocalia fuciphaga natunae (1,3 g) 5,6%. Oypsiurus parvus myochrous
(1,4 g) 5,7%. Apus apus (3,5 g) 6,4%. Apus melba (6,1 g) 6,4%. Verlauf regelmäßig.
Der Raumersparnis wegen bleiben im weiteren die Namen der einzelnen Arten meist
weg, sie ergeben sich aus den gin den systematischen Listen. Um die Fülle des Materials
auszunützen, auch weil erst dann die Regelmäßigkeit des Verlaufs deutlich wurde, sind
die Arten nach den Eigewichten gruppiert.
Spheniseidae:
(52— 55 g) 9.0.5613 79,2%5- Mittel 3,1%.
(92—120 5) 10,4 bis 13,2%. Mittel 11,4%.
(124-306 5) 11,8 bis 12,9%. Mittel 12,2%, nahezu konstant.
(425 g) 14,2%,
In diesen Beispielen hat das größte Ei auch das größte Rg, das kleinste Ei das kleinste
Rg. Es wird sich zeigen, daß dies nicht immer so ist. Teils springen nur einzelne Arten
aus der Reihe, teils ist die Stetigkeit des Wachsens überhaupt gestört.
Anatidae:
(25— 508) (5,3 abnorm) 7,0 bis 11,1%. Mittel 8,40% (D;,).
(51—100 g) 6,7 bis 15,3%. Mittel 8,98% (D;,)
(101—150g) 7,6 bis 14,2%. Mittel 9,83% N
(151—200 g) 9,0 bis 12,8%. Mittel 11,14%, (D;).
(247 g) 10,1% bei Oygnus De springt aus der Reihe.
(251—300 g) 11,2 bis 12,0%. Mittel 11,3%, (D N .
(301—340 g) 11,4—12,8°%. Mittel 11,88% (D
Hier finden nn die größten Rg nicht bei e größten Eiern, sondern 14,2%, bei
Biziura lobata mit G = 128g und 15,3% bei Lophodytes cucullatus mit nur 60 g Ei-
gewicht. Das niedrigste Rg —= 6,7%, zeigt sich bei Histrionicus histrionicus (G = 53 g),
nicht bei der kleinsten Art, denn Anas crecca (27 g) hat zwar auch nur 7,0%, aber
Cheniscus coromandelianus (27 g) 10,4%, obwohl er ein Höhlenbrüter ist. Gesamt-
mittel Dies = 9,58%
Scolopaeidae:
Insgesamt Rg = 4,5—6,5%. G = ee es Be, 9,21%,
(5,8—10g) 4,5 bis 5,6%. Mittel 4,76 7% (D,).
(11—20g) 4,5 bis 5,5%. Mittel 4,97%, (D Ss
(21—30g) 4,6 bis 6,3%. Mittel 5,31% en
(31—40 g) 4,9 bis 6,3%. Mittel 5, 70%, (D
(41—50 8) 5,0 bis 5,9%. Mittel 5,53% (D
(51—60 8) 5,5 und 5 ‚T%. Mittel 5, 600 7a Di
(D
(71—76g) 6,2 bis 6,3%. Mittel 6,25 0,
Das in den Durchschnitten beinahe stetige Wachsen der Rg ist im einzelnen stark
gestört (siehe Maßliste Bd. I, S. 406— 414). Das niedrigste Rg — 4,5—4,6°%, findet man
bei mehreren Arten, so bei Erolia minuta (6,3 g), aber auch bei dem viel größeren
Philomachus pugnax (21,8). Größtes Rg = 6,3%, hat u. a. Bartramia longicauda (25,2 g).
Das größte Ei, Numenius arquata (76 g), zeigt 6,3%, und das kleinste Ei, Erolia tem-
minckii (5,8 g), 4,8%, was, wie obige Reihe, für das Ansteigen der Rg mit wachsendem
48 Mathematischer Teil
G spricht. Alle diese Schalen sind für ihre Größe auffallend dünn, obwohl die Eier am
Boden ohne gutes Nest nicht besonders weich gebettet liegen.
Auch bei den Greifvögeln (Falconiformes) und Trappen (Otididae) hat gemäß der
Norm meist die größere Art auch das größere Rg. Entwicklung in nur einer Richtung.
‚ Bucerotidae: x
(12—18,6g) 7,2 bis 9,4%. Mittel 8,3% (D;).
(21—29 g) 7,3 bis 8,3%,. Mittel 7,8%, (D,)
(31-585 g) 7,3 bis 10,2%. Mittel 8,5%, (D,)
(61,6—77g) 8,9 bis 9,1%. Mittel 9,0% (D»).
(95,3 und 101,3 g) 9,2 und 9,5%. Mittel 9,4%, (D;).
D,;; = 8,4%, für alle in den Listen mit Rg versehenen Nashornvögel. In den Mittel-
werten der Rg aller Größengruppen nur wenig verschieden, im einzelnen aber unregel-
mäßig verlaufend. Das kleinste Rg — 7,2% findet sich bei Tockus fasciatus semi-
fasciatus (18,6 g), nicht beim kleinsten Ei der Familie, welches Tockus erythrorhynchus
hat mit 12g und 8,4%. Das größte Rg = 10,2%, besitzt Penelopides exarhatus mit
31,4 g, während die größte Art, Bucorvus cafer mit G = 100,5 g, nur Rg = 9,5% auf-
weist.
Dieses Wachsen der Rg bei zunehmender Eigröße erscheint aus ec Gründen
als der normale Fall. Wo das anders ist, drängt sich der Gedanke auf, daß beim Größer-
oder Kleinerwerden der Vögel und Eier im Laufe der Entwicklung die Mengenänderung
des Schalenkalks nachhinkt, wie bei Alectoris graeca magna, Cuculus canorus bakeri
und anderen. Kleine Eier mit großem Rg könnten, wie die Vögel, früher größer gewesen
sein und umgekehrt, so daß eine zeitliche Riehtung in der Änderung der Vogelgröße
erkennbar würde. Entsprechendes ließe sich Be: auch bei anderen Unregelmäßig-
keiten in den relativen Eigewichten (RG) denken, da anscheinend auch die Eigrößen-
änderung bei Größenänderungen in der Stammesgeschichte nachhinkt (vgl. S.51
unter Picidae).
IV) Beispiele für durchschnittlich fast gleiche Rg trotz verschiedener Eigröße
Charadriidae: Insgesamt Rg = 4,5— 7,7%, G = 6,0—34,2 g, D,ı = 6,35% ! Für Eier
dieser Größen recht dünne Schalen.
(6—-10g) 5,2 bis 7,3%. Mittel 6,39% (D3o)-
eo g) 5,5 m u ae Dirk
(16—20 g) . 4,5 bis 7,3%. Mittel 6,60% (
(21—25g) 4,8 bis 7,4%. Mittel 6,43% (D,ı)-
(26—34g) 5,1 bis 6,9%. Mittel 6,38% (Dyo)-
Die größten Eier (Squatarola (34,2 g) und Pluwvialis (33,0 g)) haben nur 5,4%, und
5,1%, also gegen die Regel, dagegen die kleinsten [Charadrius dubius jerdoni (6,0 g) und
Hlseyor nis melanops (6,3 g)] 6,0% bzw. 7,0%. — Das höchste Rg = 7,7%, hat Pluvia-
nellus socialis (11,3 g), wogegen a morinellus (17,0 g) das niedrigste Rg = 4,5%,
aufweist. — Der Verlauf ist also sehr unregelmäßig, der Unterschied in den Mittelwerten
aber gering.
Turdidae: Die Rg schwanken bei den verschiedenen Arten nur wenig um 5,5%. Die
graphische Darstellung von g und G ergibt hier eine gerade Linie, d.h. diese beiden
Größen sind hier einander nahezu proportional. Ein ziemlich konstantes Rg zeigen
überhaupt die meisten kleinen Arten.
mr.
j
f
ö
Berechnungen für Zwecke der Oologie 49
Sturnidae:
(3,2— 4,5 g) 5,2 bis 7,8%. Mittel 6,15% (D;,).
(4,6— 6,0 8) 5,2 bis 6,8%. Mittel 6,24%, (D,,).
(6,1— 7,5g) 5,7 bis 7,3%. Mittel 6,58%, (D;,)-
(7,6— 8,9g) 5,1 bis 7,0%. Mittel 6,19% (D,,)-
(9,0—12,5 g) 5,3 bis 6,5%. Mittel 5,98% (D,;). Gesamtmittel 6,30 0, (D
Trotz erheblicher Unterschiede in der einzelnen Gruppe (z. B. in ir a 5,7 bis
7,3%) sind die durchschnittlichen Rg in allen fünf Gruppen einander nahe. Dennoch ist
der Verlauf unregelmäßig, denn das kleinste Rg (5,1%) finden wir nicht bei der Art
bzw. Unterart mit dem kleinsten Ei, sondern bei Onychognathus n. nabouroup mit
seinem G — 8,9g, während Sturnus malabaricus nemoricola als Unterart mit dem
kleinsten Ei (3,2 g) das größte Rg — 7,8%, aufweist. Die Unterart mit dem größten Ei
(12,5 g), Gracula religiosa intermedia, hat als Rg nur 6,0%
Craeidae: Kleinste und größte Arten zeigen im Durchschnitt gleiches Rg (12,5%),
eine mittelgroße Gruppe aber ein niedrigeres (9,8%).
Corvidae:
0 ) 5,2 bis TA. Mittel 6,09% (Dao)-
(11-158) 5,4 bis 7,1% Mittel 6,16% (D;,).
) > In De En 4 2 YA De ;
5,2 bis 7,4%. Mittel 6,5 5
(26— 30 > 6,1 bis 7,1%. Mittel 6,7 DI “
(31—33 g) 6,4 bis 7,3%. Mittel 6,73%, (D
Die Variation der Rg-Prozente in den ek G-Gruppen ist praktisch ebenso
gleichgroß, wie es die Mittelwerte sind, die nur wenig um 6,42%, schwanken. Im einzelnen
aber unregelmäßger Verlauf (siehe Maßliste).
Das kleinste Rg (5,2%) haben C'yanocitta stelleri azteca und Podoces biddulphi, beide
mit G=8,9g und Corvus macrorhynchos levaillantii mit G —= 21,9 g, nicht Pseudo-
podoces humilis saxicola als kleinste Unterart mit G=3,0g und Rg = 6,0%. Das
drittgrößte Rg (7,2%) hat Cissilopha beecheri trotz des geringen Eigewichts von 10,0 g,
wogegen 7,3% bei Corvus corax principalis, einer Unterart der größten Art in dieser
Familie, mit G = 30,9 g und 7,4% bei Corvus eryptoleucus mit G — 21,0 g niedrig liegen.
V) Beispiele für kleinste Rg bei größtem Ei in der Familie
Megapodiidae:
(82-100 g) 7,4 bis 8,2%,. Mittel 7,93%, (D,).
(101-160 8) 6,3 bis 8,0%. Mittel 7,03%, (D,,).
(161-222 2) 6,1 bis 7,1%. Mittel 6,69%, (D,)
Hier ist der normale Verlauf umgekehrt: Mit wachsendem Eigewicht nimmt das
relative Schalengewicht ab. Während die kleinsten Formen (Megapodius pritchardi mit
G = 82 g und M. 1. laperouse mit 86 g) als Rg 7,8 bzw. 8,2%, haben, zeigen die großen
Arten (Macrocephalon maleo mit G — 222 g und Leipoa ocellata mit G = 175 g) ein Rg
von nur 7,0 bzw. 6,1%, also gegen die Regel.
Tinamidae:
(12—25 9) 6,2 bis 8,9%. Mittel 7,39% (
(26—40 9) 5,7 bis 7,0%. Mittel 6,30% (
(41—60 8) 5,7 bis 7,4%. Mittel 6, 56°, (
(61—80 8) 6,1 bis 7,4%. Mittel 6,91 % (
(81—105 g) 5,5 bis 7,6%. Mittel 6,57% (
55
— Gesamtmittel 6,46% (D;s)-
4 Oologie, 41. Lieferung
50 Mathematischer Teil
Hier hat das große Nothocercus bonapartei intercedens-Ei mit G = 105 g das kleinste
Rg = 5,5%, gegenüber den kleinsten Arten Tiaoniscus nanus mit G—=12g und Rg
— 7,3%, und Orypturellus tataupa inops mit G = 15 g und Rg = 8,9%.
Jacanidae: Die kleinen Arten mit 7,1 und 7,4g Eigewicht haben Rg = 8,9% und
8,8%, die mit 8,3 bis 11,9 g nur 7,1 bis 6,0%. Die größte Art, Hydrophasianus chirurgus,
mit G = 14,1 g sogar nur 5,5%. Dazwischen springt aus der Reihe Actophilornis afri-
cana mit G — 8,6 g und Rg = 10,1%. Hier besitzt also das größte Ei die relativ dünnste
Schale. — Einen so großen Unterschied im Rg wie hier (5,5: 10,1%) bei einander
nahestehenden Arten findet man nur noch bei Francolinus und Aegotheles/ Podargus.
Reeurvirostridae: Die beiden größten Eier (Cladorhynchus leucocephalus und Ibido-
rhyncha struthersii) mit G = 44,0 bzw. 38,6 g haben die kleinsten Rg (6,0 bzw. 5,5%).
Alle übrigen Arten (21,3—32,5 g) pendeln so unregelmäßig zwischen 6,3 und 6,9% ,daß
keine Tendenz erkennbar wird.
Coraeiidae: Die fünf kleineren Arten und Unterarten mit G — 11,4 bis 12,3 g haben
Rg = 7,7—8,5%. Mittel 7,96%, (D;). Alle übrigen zeigen G — 14,8—15,9g und Rg
— 6,1— 7,7%. Mittel 6,91% (D;j.). Das größte Ei (Zurystomus o. orientalis) hat bei
15,9 g als Rg nur 6,9%, wodurch eine fallende Richtung wenigstens angedeutet ist.
Den Fall des kleineren Rg bei größerem Ei sehen wir auch bei Oueulus c. canorus:
c. bakeri und Cuculus fugax nisicolor: f. hyperythrus.
VI) Beispiele für die Variation der Rg innerhalb der Gattung
Larus: Regelmäßiger Verlauf, kleinste Art hat kleinstes Rg, größte Art das größte.
Larus minutus (19,7 g) 5,9%. L. ridibundus (37,5 g) 6,0%. — L. canus (53,5 g) 6,1%. —
L. fuscus (78,5 g) 6,5%. — L. argentatus (92 g) 6,7%. — L. marinus (117 g) 7,3%.
Fulica: Alle Arten pendeln unregelmäßig zwischen 8,4 und 9,5%, ohne daß eine
bestimmte Tendenz erkennbar wäre, aber die größte Art (F. gigantea) mit G = 74,3 g
zeigt wie F. atra australis (G = 31,2 g) das niedrigste Rg = 8,4%, und die kleinste
- Art (F. americana alai) mit G — 28 g hat das fast Röchste Rg = 9,3%.
Nach meiner Hypothese würde sich aus einer mittelgroßen Stammart durch Ver-
größerung F. gigantea gebildet haben, F. americana alai durch Verkleinerung, also Ent-
wicklung der Größen in zwei Richtungen.
Caprimulgus: Insgesamt Rg = 5,7—8,0%,, G = 4,7—12,8 g, D;, = 6,54%.
Kleinste Arten: C'. donaldsoni (4,7 g) 6,8%, CO. maculicaudus (4,8 g) 7,70%, CO. ni-
grescens (3,0 g) 7,0%, Ü. enarratus? (5,2 g) 6,7%, C. parvulus, C. m. madagascariensis
und C. inornatus (5,4 g) 7,6 bzw. 6,7 bzw. 6,7%, ©. asiaticus (5,6 g) 7,0%, O. rufigena
u. ©. cayennensis (5,7 g) 6,7 bzw. 7,9%. Mittel 7,08%, (D;o)-
Mittelgroße Eier: C. natalensis (6,4 g) 6,1%, ©. longirostris bifasciatus (6,6 g) 8,0%,
©. vociferus (7,0 g) 5,7%, ©. aegyptius (8,4 8) 6,0%, ©. ruficollis (9,0 g) 6,5%. Mittel
6,40%, (D;).
Größte Art: C. carolinensis (12,8 g) 5,9%.
Die kleinsten Arten zeigen also im Durchschnitt ein höheres Rg als die übrigen, die
größte Art hat das fast niedrigste Rg. Der Verlauf ist jedoch unregelmäßig, da sowohl
die größten als auch die kleinsten Rg sich auch bei mittelgroßen Eiern finden.
Caprimulgidae: Innerhalb der ganzen Familie Nachtschwalben erkennt man in den
durchschnittlichen Rg der Eigrößengruppen ein geringes Absinken mit wachsendem
-
Berechnungen für Zwecke der Oologie 51
Eigewicht:
6,84%, (5,7— 8,0%) bei Eiern von 4,1— 7,0 g (43 Formen),
6,56% (3,4—74A%Y) » » » 7,1—10,0 g (38 Formen),
6,40% (5,5—7,1%) » s „ 411,0—16,0g (6 Formen),
6,200, (6,1—6,3%) » En „ 17,0—20,8g (2 Formen).
Auch dabei hat das kleinste Ei, Chordeiles p. pusillus, mit 4,1 g ein etwas größeres Rg
(6,8%) als das Ei der größten Art, Eurostopodus macrotis cerviniceps mit 20,8 g (6,3%). —
Durchschnitt bei sämtlichen Nachtschwalben 6,69%, (D;,), bei den Spechten (Picidae)
7,0%. Diese Höhlenbrüter haben also eher dickere Schalen als die offen brütenden
Nachtschwalben (Einzelheiten unten S. 51).
Kleine Passeriformes: Bei den Eiern der kleinen Sperlingsvögel sind die Unterschiede
in den Eigrößen und besonders im relativen Schalengewicht meist zu gering, als daß sie
ein Steigen oder Fallen der Rg mit wechselndem G deutlich erkennen ließen. Zum
Beispiel: Sylvia curruca (1,40 g) 5,9%. — melanocephala (1,73 g) 5,6%. — communis
(1,78 g) 5,9%. — borin (2,23 g) 5,7%. — nisoria (2,63 g) 6,0%. Auffallend: nur Pro-
tonotaria citrea (2,08 g) 7,1%, wogegen alle anderen Parulidae nur 4,5—6,4°%, haben.
Corvus: splendens (13,7 8) 5,9%. — frugilegus (16,0 g) 6,6%. — ruficollis edithae
(18,9 8) 6,4%. — c. corone (19,8 g) 6,3%. — coraz tingitanus (26,0 5) 6,6%. — c.coraz
(28,8 g) 7,1%. — coraz tibetanus (31,4 g) 6,4%. — Kleinstes Rg bei der kleinsten Art,
sonst fast gleiches bei den übrigen Arten.
Zum Vergleich mit den Caprimulgiden seien noch die Spechteier (Picidae) hier an-
gefügt, deren Schalen z. T. wider Erwarten kaum dünner sind. Ausgesprochene Höhlen-
brüter haben hier im Durchschnitt Eischalen von fast gleicher Schalendicke wie aus-
gesprochene Freibrüter, besonders in der Größengruppe 11—18 g (6,40 : 6,62%).
Pieidae: Insgesamt Rg = 5,0—8,8%, G = 1,1—18,0 g, Dj. = 6,98% -
Die kleinsten Arten (Picumnus, Verreauxia, Sasia) mit G = 1,08—1,45 g haben
Rg —= 6,4—8,3°%,. Mittel dieser Arten 7,51%, (D;,). Nun alle, auch diese Spechte:
(1,1-5,0g) 5,0 bis 8,6%,. Mittel 6,90%, (D;,),
(5,1-8,0g) 5,3 bis 8,8%,. Mittel 7,15%, (D,,),
(8,1—-10,0 8) 5,8 bis 7,7%,. Mittel 6,91%, (D,,),
(11-185) 6,4 bis 6,8%,. Mittel 6,66%, (D,).
Verlauf unregelmäßig. Das kleinste Ei (Verreauxia mit 1,08g) hat 6,9%, wie das
größte Ei (Mulleripicus mit 18,3 g und 6,3%). Das niedrigste Rg —= 5,0%, zeigt der
kleine Dendrocopos kizuki nigrescens mit 2,3 g. Höchste Rg —8,3%, bei Colaptes auratus
luteus mit 6,48, Chrysocolaptes lucidus stricklandi 8,7%, mit 6,6g, Meiglyptes tukki
8,6% bei G=3,6g und Trichopicus cactorum 8,4% bei G=3,3g, Sasia abnormis
8,1%, bei 1,36 g, vielfach 8,0% , nämlich bei 3 Colaptes-Formen mit 6,3—8,0 g, Picus
zanthopygaeus mit 5,7 g, Mesopicus goertae mit 4,9g, Sasia ochracea mit 1,38 g, Pi-
cumnus auratus dorbignianus mit 1,25 und schließlich P. :. innominatus mit 1,13 g.
Die hohen Rg bei den kleinsten gegenüber den niedrigeren Rg bei bedeutend größeren
Arten sind weitere Beispiele für den vorstehend bei den Bucerotidae ausgesprochenen
Gedanken (S. 48). Der Gegensatz zu anderen kleinen und selbst größeren Specht-Arten
mit nur 5,3—5,3%, ist auffallend, so bei Veniliornis, Picus canus tancolo, Chrysoptilus
punctigula, kleinsten Dendrocopos u. a.
VII) Variation der Rg innerhalb der Art. Gewöhnlich weichen die Rg der extremen
Eigrößen innerhalb der Art nur um etwa + 10%, vom Mittel ab, was aber so zu verstehen
ist, daß z. B. statt 7%, auch 6 oder 8%, vorkommen. Größere Unterschiede berechtigen
zu Zweifeln an der richtigen Bestimmung, soweit normal entwickelte Eischalen vor-
4*
52 Mathematischer Teil
‘
‚ liegen. Einige Beispiele paläarktischer Arten mögen das belegen, wobei der Durch-
schnittswert in Klammern steht.
Anas p. plajyrhynchos 7—9% (8,2%) Nyctea scandiaca 8,0— 8,8%, (8,2%)
Gypaetus b. barbatus 8—12%, (10,1%) Caprimulgus e. europaeus 6—8%,(6,4%,)
Buteo b. buteo 7,4—9 5°% (8,1%) Alcedo atthis ispida 4,3—5,7%,(5,0%)
Ardea c. cinerea 7,0—8,4%, (7,6%) Picus v. viridis 6,4—7,7%,(6,8%)
Otis t. tetrazx 6,7— 9,4 0, (8,4%) Turdus v. viscivorus 5,2—6,2°%,, (5,5%)
Vanellus vanellus 5,6—6,3°, (6,0%) Motacilla a. alba 4,9—6,3%, (5,8%)
Scolopaz rusticola 4,9—5,6%, (5,3%) Fringilla c. coelebs 5,0—6,5% (5,7%)
Lymnocryptes minimus 4,1—5,4%, (4,8%) Passer d. domesticus 6,0—7,5% (6,7%)
Larus a. argentatus 5,3— 7,8%, (6,7%) Corvus c. corone 5,9— 7,3% (6,3%)
Cuculus canorus 6,5— 8,0%, (7,2%)
Für Struthio camelus ergaben sich 16— 20%, (17,9%), für Rhea 10,6— 14,8%, (12,3%).
Zwergeier aller Arten zeigen ein viel höheres Rg gegenüber normalen, obwohl ihre
Schale im Gegensatz zur landläufigen Meinung nicht dicker ist als die der normalen
Eier (s. Seite 100), sondern ganz wie diese variiert, wogegen ihr Frischvollgewicht
G viel kleiner ist.
Beispiele (mit normalem Rg in Klammern):
Pygoscelis papua 17,8%, (11,8%) Fulica atra 11,4% (8,9%)
Eudyptes sclateri 13,8% (11,2%) Vanellus vanellus 8,8% (6,0%)
Colymbus (= Podiceps) 10,5%, (9,1%) Sterna h. hirundo 9,6% (3,5%)
c. eristatus
Cygnus olor 20,5%, (11,5%) Coccothraustes c. coccothraustes 13,2%, (6,0%)
Perdix p. perdix 17,2%, (10,1%) Fringilla coelebs 7,2% (3,7%)
Gallus gallus domesticus 14,6%, (9,4%) Pica p. pica 7,9% (3,9%)
Entsprechend haben Rieseneier meist ein kleineres Rg, jedoch weniger auffallend,
weil derartige Eier die normalen in Größe nur bis zum Zweifachen, also nicht so stark
übertreffen können, wie Zwergeier gelegentlich unter die normale Größe geraten,
nämlich bis zur Erbsengröße.
Ardea cinerea 6,0% Vanellus vanellus 4,9%, (6,0%)
(normal 7,6%) sSterna hirundo 4,8%, (3,5%)
Gallus gallus domesticus 7,1%, (9,4%)
Fulica atra 8,1%, (8,9%) Coceothraustes coccothraustes 5,9%, (6,0%)
Larus. argentatus 4,3% (6,7%) Sylvia communis 4,4%, (5,9%)
(vergl. Seite 100)
Ein auffallend hohes Rg läßt kleine Eier einer größeren Art von ähnlichen, normal-
großen einer kleineren Art unterscheiden und umgekehrt. — Betr. Variation der Rg
innerhalb des Geleges siehe Seite 89.
VIII) Relatives Schalengewicht Rg bei den Brutparasiten. Daß die Eier der Brutparasiten
im allgemeinen etwas dickschaliger als die der Pfleger sind, ist eine feststehende Tat-
sache. Aber genauer betrachtet, erscheint die im relativen Schalengewicht sich aus-
drückende Schalenstärke geringer als man gewöhnlich annimmt, denn nur bei wenigen
Arten wird der (nach der etwa 10000 Formen umfassenden MS-Liste Schönwetters)
ganz allgemeine Durchschnitt der Rg = 8%, überschritten, was freilich auch für die
selbstbrütenden Cuculiden gilt.
Bei den Kuckucken stellt sich die Sache wie folgt, wobei die eingeklammerten Zahlen
das zum Vergleichen nötige Eigewicht angeben.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 53
Relativ diekschalige Eier:
Clamator-Arten 7,8— 9,2%, (5,1—9,8 g). Eudynamys-Formen 7,3— 7,5% (9,0—12,4 9),
also bei größeren Kuckucken. Unter den kleinen haben Chrysococcyx caprius 7,4%,
(2,55 8), Cacomantis variolosus macrocercus 7,4%, (1; 90 g), Ouculus c. canorus 7,2%,
(3,22 g), dessen nächste Verwandte aber weniger, so ©. c. bakeri nur 5 3/4 (2,3912).
hier also das kleinere Rg bei dem größeren Ei.
Relativ dünnschalige Eier:
Die größte Art, Scythrops novaehollandiae, hat nur 5,6% (18,2 9), Ouculus fugax
hyperythrus 5,4% (5,6 g), ©. f. nisicolor 6,4% (3,1 8). Ohrysococeyx c. cupreus (nur 1 Stück)
sogar nur 4,2%, (1,43 9) (s. Bd. I, S. 535 Fußnote). Wobei auffällt, daß wiederum das
Ei der größeren Rasse das kleinere Rg zeigt. Die kleinsten Kuckucke haben meist
nur 5—6%, als Rg, wie oft auch viele Kleinvögel, z. B. Drosseln (Turdidae), Gras-
mücken (Sylviidae), Fliegenschnäpper (Museicapidae). Eine Tendenz zum Wachsen
der Rg mit der Eigröße zeigt sich erst, wenn wir die Durchschnittszahlen vergleichen.
Kuckuckseier
mit 1,37—2,50 g Eigewicht haben 5,1— 7,4%, , im Mittel 5,95% (Da);
mit 2,51—5,0 g haben sie (4,4; 5,0) 5,4—7,4°%/,, im Mittel 6,42%, (D3;);
mit 5,1—12,4 g haben sie 5,4--9,2%,, im Mittel 7,69%, (D
aber die größte Art (Scythrops = 18,2 g) springt mit nur 5,6%, aus des Reihe. Der
Gesamtdurehschnitt aller Rg der parasitären Cueuliden ergibt sich zu D,, = 6,44%
(5,1—9,2%,) gegenüber dem ihrer Wirte mit 5,60%, (5,0—6,4%) und dem der Selbst-
brüter mit D,, = 7,55% &,5—10,0%,), wobei jedoch deren bedeutendere Eigröße
mitspricht, der nach der Regel ein größerer Anteil der Schale am Eigewicht zukommt,
also ein größeres Rg.
Betrachten wir in diesem Zusammenhang auch die Eier der selbstbrütenden Kuckucke,
so hat wieder die größte Art, Carpococcyx radiceus mit 6,3%, (31,6 g) das fast kleinste
Rg. Das größte finden wir bei C’rotophaga suleirostris und 2 Centropus mit 10%, (10,3
bzw. 15,5 u. 15,7 g), sonst bei C’entropus mit 5,7— 9,5%, (9,0— 28,4 g), bei kleineren Arten
wie Ceuthmochares aereus mit 9,2% (7,6 g) und Piaya minuta gracilis mit 9,0% (5,0 g).
Bei den verschiedenen Gruppen der Eigrößen pendelt das durchschnittliche Rg auf
und ab.
Bei G = 5,0—5,3 g zeigt sich 8,47% (7,6— 9,0%) (
Bei 6,3— 10 g ist Rg = 8,06% (5,5— Sn OD 5)%
Bei 10,1— 15,0 g ist Rg = 7,50%, (5,7— 10%) (D;.)-
Bei 15,1— 20,0 g ist es 8,10%, (6,5— 10,0%) (D;s)-
Bei 20,1—25 g ist es 7,38%, (6,4—8,2%,), und bei 25,1—31,6 g ist es 7,60%, (6,3— 9,5%).
Zuerst fällt Rg mit wachsendem G, dann steigt es, um zuletzt (D,,.,) wieder zu fallen.
Unter den parasitischen Icteriden zeigen Scaphidura o. oryzivora (11,2 g) Rg = 7,8%,
die wenigen der Rasse S. o. impacifa (10,6g) Rg = 9,6%, und die Molothrus-Arten
(außer M. badius, einem Selbstbrüter) (2,4—4,9g) Rg = 7,7—8,9%. Durchschnitt
all dieser Rg ist 7,88% gegenüber 6,28%, (5,0— 7,9%, je einmal mit Fragezeichen
4,0 und 9,4%) bei den selbstbrütenden Stärlingen und 6,18%, bei 20 Arten der in
Betracht kommenden Brutpfleger (5,5—6,8%,). Also auch hier sind die Eischalen
der Schmarotzer relativ schwerer als die ihrer Opfer.
Das Schalengewicht der brutparasitischen Kuckucksente (Heteronetta atricapilla)
ist anscheinend nicht bekannt.
Von den brutparasitischen En weisen Indicator minor (3,7g) ein Rg
— 7,6% und Indicator indicator (4,8 8) 7,3%, auf gegenüber ihren Wirten mit Eiern
54 Mathematischer Teil
von 3,3—7,1g und Rg = 4,8—6,2°%,, von denen 8 Arten durchschnittlich Rg = 5,7%
haben, demnach ebenfalls weniger als die Schmarotzer.
Der nestparasitische Tyrann Legatus hat Rg = 5,0%.
Hinsichtlich der Witwen (Viduinae), einer ganzen Gruppe von Brutparasiten
unter Ploceiden, ist zu vermuten, daß auch ihre Eier relativ dickere Schalen besitzen.
Sicheres kann erst erwartet werden, wenn die Besitzer solcher Eier deren Schalen-
gewichte mitteilen, was bisher fast völlig unterblieb. Ich besitze nur Vidua macroura
mit G = 1,04g und Rg = 7,3%, gegenüber deren Brutpflegerin Estrilda astrild (0,73 g)
mit 6,2%, was für die Vermutung spricht. (Neuere Maße in unserer Liste ergeben
allerdings 1,18 g mit Rg = 6,5%, was nur einen kleinen Unterschied gegenüber dem
Wirt bedeutet. Hrsg.) Ebenso ist dies der Fall bei den unsicheren Eiern von Vidua
(‚‚Steganura‘‘) paradisaea, über die BELCHER (1930) berichtet, wobei er erstmalig auch
die Schalengewichte angibt. Nesteigner waren Pytilia melba mit G = (Liste 1,27)
1,29—1,62g (Mittel 1,46g) und Rg = 4,7—5,8%, (Mittel 5,13%, Liste 5,8%) sowie
Pytilia afra mit G = 1,00—1,20 g (Mittel 1,08 g, Liste 1,25 g) und Rg = 5,4—6,5%
(Mittel 6,0%, Liste 5,6%), berechnet nach BELCHERS Angaben. Für die fraglichen
Vidua-(,‚Steganura‘‘-)Eier ergibt sich ebenso G = 1,56—1,91g (Mittel 1,725) und
Rg —= 5,4—6,3%, (Mittel 5,75%). Diese Schalen wären demnach nach BELCHERS
Werten dünner als die von P. afra, jedoch dicker als die von P. melba, deren Rg ich
aber im vorliegenden Fall für ausnahmsweise niedrig halte. Nach den reichhaltigeren
Werten in der Liste wären die Schalen etwa relativ gleich schwer: 5,7 gegen 5,8 bzw.
5,8 gegen 5,6%. Hierher oder zu V. orientalis obtusa gehört wohl auch das von BELCHER
mit Vorbehalt als Yypochera (heute Vidua) funerea angesprochene Parasitenei mit
G = 1,60 g und Rg = 5,6%, gegenüber den 4 zugehörigen Nesteiern von Pygilia afra
mit G = 1,05 g und Rg = 6,5°% (s. oben Viduinae Bd. III, S. 528). Diese sind demnach
relativ dickschaliger als das bei ihnen eingeschmuggelte Ei, also gegen die Regel.
Andererseits meldet unsere Liste für ein Ei von V. funerea purpurascens 1,21 g und
Rg = 6,1%. Es wurde bei 3 Lagonosticta rhodopareia jamesoni gefunden (Bd. III, S. 525),
die i.D. 1,17 g wogen. Für diese Form führt unsere Liste allerdings 0,94 g als Ei-
gewicht und 5,8%, als Rg an, was eine etwas dünnere Schale gegenüber jenem Vidua-
Ei bedeutet.
Für den Kuckucksweber, Anomalospiza, kenne ich kein Schalengewicht.
IX) Ag bei Höhlen- und Offenbrütern. Untersucht man die Frage, ob Höhlenbrüter
gegenüber Offenbrütern relativ dünnere Eischalen, also kleinere Rg, besitzen, so kann
dazu ein Vergleich mit dem durchschnittlichen Rg aller Arten überhaupt = 8,0%
dienen. Da sind die Eier der Segler (Apodidae), Eisvögel (Alcedinidae), Sägeracken
(Momotidae), Bienenfresser (Meropidae), Glanzvögel (Galbulidae), Faulvögel (Bucco-
nidae) und Bartvögel (Capitonidae) mit Rg = (4,1) 5—6 (selten bis 7,3)% allerdings
recht dünnschalig, etwas kräftiger die der Pfefferfresser (Ramphastidae) mit 5,5— 7,7%.
Aber die Papageien (Psittacidae), Racken (Coraciidae), Nashornvögel (Bucerotidae)
und Spechte (Picidae) erreichen mit (5,0—6,4 selten) 6,5— 10%, schon den Durchschnitt
und mehr, wie auch der kleine Aegotheles mit 10%. Rechnet man zu den „Höhlen“
auch die geschlossenen Nester mit seitlichem Eingang, so bieten Beispiele für niedrige
Rg die Laubsänger (Phylloscopus), die Nectariniidae, Bündelnister (Phacellodomus,
Anumbius, Siptornis), manche Schwalben (Hirundinidae) und Tyrannen (Tyrannidae),
die Stärlinge (Icteridae) und andere, die letzten nur, soweit sie selber brüten und
nicht wie die Brutparasiten unter ihnen etwas höhere Rg aufweisen.
Wenn ein Eiufluß des Brütens in Höhlen besteht, wird man ihn auch da erwarten,
wo in Familien oder bei einander nahestehenden Arten beide Nistarten vorkommen.
Die Rauchschwalbe (Hirundo r. rustica) mit offenem Nest hat Rg = 5,4%, die Ufer-
schwalbe (Riparia r. riparia) im Höhlennest nur 4,9%. Indessen findet man nicht
a a Zi
TELLER ST > ii
leeren nn rung une
Berechnungen für Zwecke der Oologie 55)
leicht weitere derartig deutliche Fälle. Die in Höhlen brütenden Tauben (Columbidae),
Zwersialken (Polihierax, Microhierax) und Pseudopodoces haben ebenso große Rg
wie ihre in offenen Nestern brütenden, vergleichbaren Ver wandten. Die Eier der Puffi-
nas-Gruppe haben größere Rg als die gleichgroßer, zudem gar nicht mit ihnen ver-
wandter Möwen (Larinae).
Zur näheren Untersuchung der Frage stellten wir eine Liste auf für je 25 Arten
mit gleichschweren Eiern beider Kategorien. Größenordnung: von der Schwanzmeise
(Aegithalos caudatus) bis zum Abessinischen Hornraben (Bucorvus abyssinicus) mit
G=0,7g bis 95g für die Höhlenbrüter, und vom Kolibri (Ramphodon naevius)
bis zur Silbermöwe (Larus argentatus) mit G = 0,8g bis 92g für die Offenbrüter.
In 15 dieser Fälle (= 60%) waren wider Erwarten die Rg der Offenbrüter kleiner
als die der Höhlenbrüter, die Eischalen also dünner, in 4 Fällen (= 16%) größer
(bei Coccothraustes, Dendrocygna, Phalacrocorax, Chlamydotis gegenüber Galbula, Ara,
Aceros und Dromas), in 6 Fällen (= 24%) gleich (bei Melithreptus, Oenanthe, Cissa,
Myiophoneus, Falco und Columba gegenüber Phoenicurus, Alcedo, Eumomota, Mega-
laima, Ramphastos und Mulleripicus). Als Durchschnitt ergab sich für die Offenbrüter
Rg,; — 6,28%, dagegen für die Höhlenbrüter Rg,, — 6,94%, also praktisch fast
Gleichheit! Entgegen der landläufigen Meinung. Hierzu noch einige Beispiele.
Rg bei jeweils gleichschweren Eiern:
G Höhlenbrüter Rg Rg _Oiffenbrüter G
0,365 Aegithalos caudatus 5,9% | 4,0% Kolibri Ramphodon naevius 0,70 8
1,355 g Picumnus temminckii 7,4% 5,4%, Carduelis spinus 1,29 g
1,678 Micropsitta pusio 72%| 33% Acanthis c. cannabina 1,66 g
15,58 Coracias garrulus 7,1% | 3,3% Jzxobrychus sturmiti 15,0 8
8,08 Aegotheles cristatus 10,4% | 5,4% Anthochaera carunculata 8,08
60,05 Lophodytes cucullatus 15,3% | 8,1% Buteo b. buteo 60,0 8
Diese Beispiele zeigen bei den Höhlenbrütern relativ stärkere Eischalen.
G Höhlenbrüter Rg Rg 0Offenbrüter G
3,38 Galbula ruficauda 5,3% 6,0%, Coccothraustes c. cocco- 3,98
rufoviridis thraustes
6,5g Merops apiaster 6,0% 8,5% Coturnix coromandelica 6,68
58,5 g Aceros nipalensis 8,6% | 10,7% Phalocrocorax carbo 58,0 8
38,0g Ara militarıs U 10,0% Dendrocygna javanica 37,08
70,08 Dromas ardeola 710% 8,4%, Chlamydotis undulata 68,0 8
Hier haben die Höhlenbrüter relativ schwächere Eischalen gegenüber den Offenbrütern
von jeweils gleichem Eigewicht.
Man wird also die gestellte Frage dahin beantworten, daß viele, aber bei weitem
‘ nicht alle Eier der Höhlenbrüter dünnere Schalen besitzen gegenüber gleichgroßen
Eiern der Offenbrüter, wobei der größere Schutz gegen Unbilden der Witterung und
Feinde eine Rolle spielen kann.
X) R@ bei Nestflüchtern und Nesthockern. Zu vermuten war auch ein Unterschied
in den Rg bei den Nestflüchtern und den Nesthoekern. Bei der Zusammenstellung
der Rg von je einem Dutzend Arten gleichschwerer Vögel der verschiedensten Größen
(40 bis 9500 g) ergab sich Gleichheit der Rg, nämlich im Durchschnitt 7,54%, bei den
Nesthockern und 7,48%, bei den Nestflüchtern. Ebenso bei je einer Serie von 20 bis
56 : Mathematischer Teil
200 g schweren Vögeln mit durchschnittlichem Rg,, = 6,3%, bei den Hockern, und
Rg,- = 6,2%, bei den Flüchtern. Danach erscheint die Vogelgröße ohne Einfluß auf
das relative Schalengewicht. — Wurden die durchschnittlichen Rg einer Anzahl von
Familien verglichen, so fand sich Rg,; = 7,0% bei den Nesthockern und Rg,, = 8,1%
bei den Nestflüchtern, wonach diese etwas stärkere Eischalen besitzen. Das bestätigt
auch ein Vergleich von je 25 Arten mit gleiehschweren Eiern der Größenordnung
3,3—455g bzw. 3,4—477g. Für die Nesthocker ergab sich Rg,; = 7,48%, für die
Nestflüchter Rg,, — 8,47%. Hierbei hatten 15 Nestflüchter-Arten (= 60%,) kräftigere
Eischalen als die Nesthocker, wogegen nur 10 Nesthocker-Arten (= 40%) stärkere
als die Nestflüchter besaßen. Gleichheit fand sich hierbei nicht. Danach haben Nest-
flüchter etwas diekere Eischalen als die Nesthocker. Verallgemeinern läßt sich das
aber vielleicht nicht, wie folgende Beispiele zeigen.
G Nestflüchter Rg Rg Nesthocker G
4,8g Excalfactoria ch. 7,3% 53,2%, Zoothera citrina rubecula 4,88
chinensis
8,9g Colinus v. virginianus 8,8%, 5,9% Ptilinopus solomonensis meyeri 8,88
14,1g Perdix p. perdix 10,1%, 6,8%, Speotyto c. cunicularia 14,6g
39,4g Numida m. meleagris 16,4%, 7,3% Strix a. aluco 39,0 g
82,0g Tetraogallus a. altaicus 10,4%, 7,2%, Ardea s. sumatrana 83,0 g
Hier haben die Nestflüchter relativ diekere Eischalen.
Anders in folgenden Beispielen:
G Nestflüchter Rg Rg Nesthocker G
5,8g Erolia temminckii 4,8% 5,7% Turdus naumanni eunomus 5,8g
9,6g Sternaa. albifrons 5,8% 6,7% FPesittacula krameri manillensis 9,78
20,2g Sterna h. hirundo 5,5% 6,8% Asio f. flammeus 21,3g
26,08 Vanellus vanellus 6,0%, 8,2%, Centropus a. ateralbus 245g
37,5g Larus r. ridibundus 6,0%, 7,2%, Ara militaris 38,08
Hier haben die Nestflüchter relativ dünnere Eischalen gegenüber den Nesthockern
von jeweils gleichem Eigewicht.
Aus der Literatur war zu dieser Frage kaum etwas zu entnehmen. GROSSFELD
(1938, S. 70—78) bringt zwar neben Rg-Angaben für Hausgeflügel auch einige für
Wildvögel, zum Teil aber nicht richtig. So z. B., wenn die Schalen seiner 5 Kiebitzeier
(Vanellus vanellus) von 2,0 bis 3,2g wiegen sollen, während für alle solche 1,12 bis
1,80 g normal ist, so daß statt Rg = 8,4 bis 13,2%, stehen müßte: 5 bis 7%. — BRot-
kehlchen (Erithacus rubecula): Eier von 3,88g mit Rg = 2,7%, bei 0,11 g Schalen-
gewicht gibt es nicht, auch nicht Taubeneier (Columba livia) mit Rg = 13,6%, auch
nicht solche der Uferschwalbe (Riparia riparia) mit Rg = 9,2%, es müßten denn
all diese ganz ausgefallene Monstrositäten sein.
Die Romanorrs (1949, S. 114) ermittelten aus je 10 Eiern der Nestflüchter und
der Nesthocker, daß die ersten im Durchschnitt Rg = 11,9%,, die anderen nur 7,0%,
haben. Der auffallende Unterschied kommt aber daher, daß die Autoren nicht gleich-
große Eier vergleichen. Ihre Nestflüchter-Eier wiegen im Durchschnitt 264g, ihre
Nesthocker-Eier nur 26 g, also nur den zehnten Teil. Da die Rg mit der Eigröße wachsen,
wird durch solchen Vergleich das Ergebnis entstellt, wenigstens dem Grade nach.
Es gibt eben in beiden Gruppen Eischalen mit relativen Schalengewichten, die sowohl
nach oben wie nach unten vom Gesamtdurchschnitt dieser (3%) abweichen, die alle
Berechnungen für Zwecke der Oologie 57
berücksichtigt werden möchten. Vielleicht sollte aber die Tatsache, daß die Nest-
flüchter meist etwas stärkere Eischalen besitzen, nur besonders deutlich gemacht
werden. Zu einer Erklärung dieser Verschiedenheit wie auch der im vorigen Kapitel
müßten noch hier ganz außer Betracht gelassene Umstände beachtet werden: Anzahl
der Eier im Gelege, das relative Eigewicht, die Ausfütterung des Nestes, die mehr
oder minder große Vorsicht, mit der sich der Vogel auf die Eier setzt (die gröbere
oder feinere Struktur der Füße, Hrsg.) und anderes, wohl auch noch Unbekanntes.
Wir vermuten zwar einen Zusammenhang zwischen dem niedrigen Rg (4,6%) und
dem dicken, weichen Flaumnest bei Batrachostomus, sehen aber keinen Grund für das
hohe Rg = 10,5%, bei dem großen Öffenbrüter Phalacrocorax und das ebenso hohe
des kleinen Höhlenbrüters Aegotheles, wissen auch nicht, warum bei manchen Fran-
colinus das Rg bis 29%, ansteigt, wogegen bei anderen Formen dieser Gattung kaum
10% erreicht werden.
Soviel über das relative Schalengewicht (Rg). Das relative Eigewicht (RG), also
das Verhältnis zwischen dem Gewicht des Eies und dem des Vogelkörpers, wird unten
im Abschnitt 3i (Seite 59 bis 75) eingehend besprochen.
h) Beziehungen zwischen Eigewicht und Anzahl der Eier im Gelege sowie zwischen
Eigröße und Eidimensionen (s. S. 63, Tab. 6). Es besteht oft die Beziehung, daß je
größer die Anzahl der Eier im Gelege, desto kleiner die durchschnittliche Eigröße
(G) ist. GROEBBELS (1937, S. 307f.) gibt unter anderen folgende Beispiele, alle aus
der (nun ausgebombten) Sammlung Moebert, Hamburg: 26 Fünfergelege von Corvus
frugilegus hatten im Durchschnitt G = 15,466 g, 22 Dreiergelege aber 16,900 g. (Also
9,3%, mehr). 7 Dreiergelege von Larus canus hatten G = 55,730 g, 6 Zweiergelege
aber 58,428 g. (Also 4,8%, mehr). 3 Fünfergelege von Acrocephalus scirpaceus hatten
G = 1,783 g, 14 Vierergelege aber 1,884 g, 13 Dreiergelege sogar 2,010 g. (Also 5,8%
bzw. 11,1%, mehr). 15 Fünfergelege von Sylvia communis hatten G = 1,740 g, 17
Vierergelege aber 1,826 g. (Also 4.9%, mehr).
Diese Regel läßt sich jedoch nicht verallgemeinern, denn es gibt viele starke Gelege
mit großen Eiern und umgekehrt.
Günstige Ernährungsverhältnisse vergrößern die Anzahl der Eier im Gelege, z.B.
beim Rauhfußbussard (Buteo lagopus) und bei der Schnee-Eule (Nyciea) in Lemming-
reichen Jahren, bei der Sumpfohreule (Asio flammeus) und der Schleiereule (T'yto alba),
wenn es viele Mäuse gibt. Tropische Arten haben in vielen Fällen kleine Gelege, oft
nur 2 Eier, aber manche brüten dafür mehrmals im Jahr.
Als irrig erwies sich die Annahme, die Gelege einander nahestehender, gleichgroßer
Vögel seien gleichschwer, Unterschiede in der Größe der Eier würden durch andere
Anzahl dieser ganz oder teilweise ausgeglichen. Es gibt dafür Beispiele. (Man vergleiche
S.34 betreffs Batrachostomus und Eudromias, (Bd.I, S. 416) betr. Cladorhynchus
und (Bd. I, S. 420) betr. Orthorhamphus).
HEINRoOTH (1922, S. 246) weist hin auf die Gewichtsgleichheit des Zweiergeleges
von Crax und des ebenso schweren Achtergeleges des Auerhuhns (Tetrao). Aber schon
bei Penelope (2 Eier = 172g) und Jagdfasan (Phasianus colchicus) (12 Eier = 375 g),
beide Vögel gleich schwer (900 g), stimmt es nicht. Auch nicht beim Goldfasan (Chryso-
lophus pictus, 550 g, 10 Eier = 267 g) und Spiegelpfau (Polyplectron 550 g, 2 Eier — 649).
Und wenn der Bartgeier (Gypaetus) manchmal nur 1 Ei legt, statt wie oft deren 2,
müßte es doppelt so groß sein; es ist jedoch nicht größer als im anderen Fall. Auch
geht die Vermutung wohl fehl, daß Circaetus, Dromas, Alca, Hemiprocne und andere
so große Eier haben, weil sie nur ein Ei legen. Denn die großen Geier zeitigen relativ
sehr kleine Eier (RG = 3%) und haben auch nur eins, während die 4 bis 12 Eier im
Gelege unsrer kleinen Sänger relativ sehr groß sind (RG bis wenigstens 17%). —
Häufig ist das erste Ei in einem Gelege etwas kleiner als die folgenden.
58 Mathematischer Teil
Wie weit die bei Haushühnern (Gallus gallus domesticus) gemachte Beobachtung,
daß die Eier mit zunehmendem Alter der Hennen größer werden, und daß an kalten
Tagen kleinere gelegt werden, sich verallgemeinern läßt und auch bei Wildvögeln
zutrifft, steht noch nicht fest, auch nicht, wieweit die Eier und ihre Anzahl in Nach-
gelegen größer oder kleiner sind als zuvor. Beides wurde beobachtet. — Im Norden
enthält das Gelege mancher Arten oft nicht nur größere Eier als im Süden, sondern
auch deren mehr. — Ungewiß ist, ob bei Arten, deren Weibchen größer sind als die
Männchen, jene aus größeren Eiern kommen. Beim Sperber (Accipiter nisus) wurde
das Gegenteil beobachtet (GoETHE 1937, S. 67, nach Brief von MEISSEL).
In unseren Maßlisten ist für die absolute Eigröße bei allen Arten je nur das dureh-
schnittliche Eigewieht (G) so gut als eben berechenbar angegeben. Für besondere
Fälle lassen sich die einzelnen G mittels unserer Formeln (20) und (21) ermitteln.
Ebenso die Variationsbreiten der Eigewichte aus den extremen Werten der beiden
Eiachsen und der Schalengewichte, die sich in unseren Maßlisten finden. — Nach
GROEBBELS (1937, S. 307) erscheint noch ungeklärt, warum die Eigewichte viel stärker
variieren als die Dimensionen. Im Gegensatz zu seinen Vermutungen hat das aber
gar nichts zu tun mit dem größeren oder kleineren Dotter und Eiklar, auch nicht
mit der Eischale, sondern es handelt sich einfach um eine mathematische Konsequenz.
Wenn das Kantenmaß (x) bei mehreren Würfeln von 1 bis 2 variiert, dann variiert
deren Volumen (x?) viel stärker, nämlich von 1 bis 8. Entsprechend bei dem Ei als
Körper im Verhältnis zu seinen linearen Achsen. Im Durchschnitt verhalten sich
die Prozentzahlen der Schwankungen der Eibreiten, Eilängen und Eigewichte in
GROEBBELS’ Beispielen wie 1 zu 1,55 zu 3,55 (13,6 :21,0:48,3%,), das heißt, die Eilänge
variiert hier einundeinhalbmal so stark wie die Eibreite, das Eigewicht rund drei-
und einhalbmal so stark. Aus den Mittelwerten unserer 67 anderen Fälle (Seite 92)
ergibt sich 1:1,55:2,85 (3,65:5,66: 10,45%). Für Haushuhneier (Gallus gallus domesticus)
fanden PEARL & SuRrFAce (1910, S. 180) das Verhältnis B:A:G = 1:1,25:2,50.
BERGToLD (1929) glaubt irrig, daß die geringere Variation der Breitenachse und
ihr höherer Einfluß auf die Größe des Eigewichts den Ornithologen noch ganz un-
bekannt sei und daß erst noch zu untersuchen wäre, ob dies nicht nur beim Haushuhn,
sondern auch bei anderen Vögeln so sei. Natürlich ist es bei allen so, im letzten Fall
ebenfalls aus mathematischer Bedingtheit. Im Ellipsoidvolumen V —= 0,524 AB?
(Formel 8) wirkt sich eine A-Änderung weniger stark aus als eine gleichgroße B-
Änderung. Durch partielle Differenzierung des Ausdrucks AB? zeigt sich mathematisch,
daß der Volumenzuwachs infolge einer A-Änderung sich zum Volumenzuwachs infolge
einer B-Änderung wie folgt verhält: £
: = SE WA E Bears. gen F
Nonne: nach A-Änderung » V Zuwachs nach B-Änderung — B - 2AB —— B :2A (38)
Dieses 2A ist aber immer größer als B. Da 2A das Charakteristikum für die B-
Änderung ist, erweist sich diese als immer von größerem Einfluß. Beispiel: Ein ellip-
soidisches Ei mit den Achsen 50 und 36,5 mm hat ein Vol. = 34,9 cm?. Mindert sich
die Längsachse A um 10 mm, so wird Vol. — 27,9, also um 7,0 cm? kleiner. Mindert
sich aber die Breitenachse B um 10 mm, so wird Vol. = 18,4 cm?, also um 16,5 cm?
kleiner. Die Änderung der Breitenachse wirkt also stärker. — Die geringere Variation
der Breitenachse gegenüber der der Längsachse erklärt sich physiologisch aus den
verschiedenen Elastizitätsverhältnissen der Längs- und Ringmuskulatur des Uterus.
Dieser ist in der Längsrichtung nachgiebiger als in der Querrichtung, wie jeder elastische
Schlauch. — PEARL & SurRFAcE (1910) fanden aber bei 7%, einer sehr großen Menge
von Haushühnern (Gallus gallus domesticus) die Breitenvariation stärker als die der
Länge, offenbar infolge ungewöhnlicher Verhältnisse im Uterus. In unserer Liste
der 67 Gelege sind es zufällig sogar 24%, — 16 Fälle (s. Tabelle 10, S. 92). Trotzdem
i Berechnungen für Zwecke der Oologie 59
ist die durchschnittliche Variation jener 67B nur 3,65%, gegenüber der der zugehörigen
67A = 5,66% ; B ist also erheblich konstanter. (Weiteres hierzu auf S. 93).
i) Eigewicht und Weibchengewicht. Wir kommen nach dieser Abschweifung auf die
Beziehung des Eigewichts zur Schwankung der Dimensionen endlich auf die Beziehung
von G zum Weibchengewicht. Das Prinzip, in diesem zweiten Teil des Handbuchs
der Oologie nur von den Eigenschaften der Eischale zu handeln, wird hier gebrochen
und das von SCHÖNWETTER im damaligen 1. Teil, dem Allgemeinen, besprochene Problem,
wie sich die Eigröße und das Eigewicht zur Größe und zum Gewicht des Eierzeugers,
also des adulten Weibchens zur Brutzeit, verhalten, in diesen Teil B übernommen.
Das Problem hat ja viel mit Berechnungen zu tun. Außerdem löst die im Anfang dieses
Abschnittes besprochene absolute Eigröße sehr oft die Frage nach ihrer Beziehung
zum Weibchengewicht aus.
I) Eigewicht und Weibchengröße. Als von der Variationsbreite der absoluten Eigröße
die Rede war (Abschnitt 3d), konnte ein Vergleich mit Vogelgrößen nicht ausbleiben,
und nur dort wurde auf die groteske Methode eingegangen, die man mittels Weglassen
der Schwanz- und Schnabellänge zur Gewinnung eines Vergleichswertes angewendet
hat.
IT) Weibchengewicht. Wir wollen zunächst auf das Weibchengewicht eingehen;
in unseren Listen des Teilen A (Ba. I—-III) sind fast 2000 Gewichte verschiedener
Unterarten und Arten angeführt — sie sind nicht etwa immer exakter als die Ei-
gewichte, da oft nur ein einziges 9 zur Verfügung stand und einige Male, bei anscheinend
gleichschweren Geschlechtern, sogar nur das Männchengewicht. Prinzipiell wurde der
Standpunkt vertreten (Bd. III, S. 489), daß, da mehr Eier gemessen werden konnten,
die Eigewichte sicherer als die der 2 sind, zumal diese im Laufe des Jahres meist stark
schwanken und ihre Variation bei Berücksichtigung individueller Unterschiede wenig-
stens so stark ist wie bei den Eigewichten. Die Angaben der Listen (Bd. I—-III) be-
ruhen zum Teil auf Wägungen außerhalb der Brutzeit und im Bd. I fast ausschließlich
auf Wägungen im Zoologischen Garten oder der Vogelstube (HEmrorH 1922,
S. 178— 180), was durchaus nicht negativ zu beurteilen ist. Denn auch die infolge
gehäufter Gewichtsarbeiten im Bd. II und III bei den Passeriformes sehr vermehrten
Q-Gewichte lassen nicht den Schluß zu, daß es hier weniger Berichtigungen als bei den
Nonpasseriformes geben wird.
Die schon HEINROTH bekannte Schwierigkeit, brauchbare Weibchengewichte zu
ermitteln, hat Schönwetter beim Vergleich von dessen Vogelgewichten mit denen
anderer Autoren bestätigt gefunden:
Widersprüche in Vogelgewichten (SCHÖNWETTER MS)
Bd.I: ing
Nyroca marila, HEINROTH 850 g, BAnZHArF (1938, S. 56) 1105—1200g 1000
Lyrurus tetrix HEINROTH 800 g, NAsımovitscH (1937) 903—1031g 750— 1000
Capella gallinago HEINROTH 100 g, NIETHAMMER (1942, S. 265) 105
86-1708
Philomachus pugnax HEINROTH 180 g, HÄrums (1928) 98 g 100
Stercorarius parasiticus HEINROTH 500 g, HAnTzscH (1905, S. 131) 500
450—625 g
Chalcites lucidus plagosus HEINROTH 60 g, STRESEMANN (Quelle?) 32
etwa 20 8
Apus apus HEINROTH 43 g, SCHLEGEL (1925, S. 153) 20,5—44 g 43
Dendrocopos medius HEINROTH 40 g, SCHLEGEL (1925, S. 147) 54—67 g 59
=
60 Mathematischer Teil
Für Francolinus francolinus asiae führt Hume (1873, S.537) als Weibchengewicht
230—480 g an.
Diese Ausnahmen von den sonst weniger oder gar nicht abweichend gefundenen
Angaben berücksichtigt nach Möglichkeit meine Neuberechnung aller Herwror#schen
relativen Ei- und Gelegegewichte (siehe unten).
III) Absolutes Eigewicht und Weibchengewicht. Mit den Vogelgewichten hat
HEISRoTH (1922) als erster in ganz großem Rahmen das Eigewicht verglichen und
darüber auch heute noch gültige Regeln abgeleitet. Bevor wir darauf eingehen, sollen
aber einige Ergebnisse von Huxrey (1927) besprochen werden, der bei seiner Aus-
wertung der Herwrot#schen Zahlen im Gegensatz zu diesem die absoluten Eigewichte
mit den Weibchengewichten verglich und nicht die relativen, die HEINROTH zugrunde
legte (siehe unten). Huxrey zeichnete wie HEINRoTH Kurven und erhielt statt der
unregelmäßigen Linienzüge HEINROTHS stetige, zum Teil logarithmisch aufgetragene
Kurven, indem er mittlere Werte für Gewichtsgruppen von Vögeln, nicht für die
einzelnen Arten, zugrunde legte. Die Widersprüche, die zu HEINROTHS zackigen Kurven
360 Zn Fa 57 In. T T rin
je))
.E |
> |
SE
= —— ANSERES
ul — :— COLYMBIFORMES
=
Lil
0 f}
0 1000 2000 4000 6000 8000
VOGELGEWICHT in g
Fig. 3. Verhältnis zwischen Eigewicht und Vogelgewicht bei den Anseres und den Colymbiformes
(heute Podicipediformes). Nach HuxLry (1927, Tafel 29). — Bei kleinen Arten verlaufen die Kur-
ven anders als bei großen derselben Gruppe, siehe S. 71
führten, verschwanden bei dieser Methode. Zwei der fünf Diagramme HvxLeys finden
sich in STRESEMANN (1928, S. 260 und 262) abgedruckt, 2 weitere hier (Fig. 3 und 4).
Ihnen liegen zugrunde die HErwRoTHschen Angaben, so der Fig. 4 die für Apterygidae
(1 Art), Anseres (16 Arten), Falconiformes (32 Arten), Galliformes (48 Arten), Otididae
(4 Arten), Limicolae (32 Arten), Laridae (14 Arten), Columbiformes (22 Arten), Psittaci-
formes (18 Arten), Cuculiformes (8 Arten), Strigiformes (16 Arten), Oscines (83 Arten).
Hvxreys ‚Plate 25° (Fig. 4) stellt für 10 Gruppen (teils Ordnungen, teils Familien)
das Verhältnis zwischen Vogelgröße und absoluter Eigröße dar. Jede Linie einer Gruppe
zeigt allerdings zunächst nur, daß der kleinere Vogel ein kleineres Ei besitzt als der
große. Die Gesamtheit der Linien läßt aber durch Gleiten auf den Diagrammen er-
kennen, wie absolut schwer bei den einzelnen Vogelgewichten die Eier der verschiedenen
Gruppen je im Durchschnitt sind, und welchen Vogelgewichten die verschiedenen
Eigewichte in den verschiedenen Familien entsprechen. Überdies zeigen die hier fast
stetigen allgemeineren Kurven den gesetzmäßigen Verlauf deutlicher, als die spezielleren
Berechnungen für Zwecke der Oologie 61
1000 2009 4000 8000
400 '
300 Apterx . La00
m >
200 “7 fzoo
VOGELGEWICHT ın g 150 150
20 40 60 80100 150 200 300 400 600 800
100= - 100
30 i en
50 60
50 50
40 40
30 30
20 20
15 15
10 = 10
8 2000 4000 [60,00]
6 Oscines
an 5 ----— Striges
ec » = 2 Trolals
m >- + —--- Änseres
= re Galii
oO | 00553 Columbae
> Z —— Psitteci
u =:
oO "7 3 = ru (Aimieolae
FR) — Falconiformes
son —= Laridae
10 15 20 30 40 60 80100 150 20 300 400 600 8001000
Fig. 4. Eigewicht und Vogelgewicht. Nach Huxrey (1927, Tafel 25, verändert). Im großen und
ganzen sind diese beiden Gewichte einander proportional. Der Grad des Wachsens ihrer Größe vom
kleinsten bis zum größten Wert ist in allen Familien ungefähr derselbe (gleiche Richtung der Kur-
ven in dieser logarithmischen Darstellung). Cuculus canorus und Apteryzx fallen ganz aus der Reihe,
dieser mit einem sehr hohen, jener mit einem sehr niedrigen Relativen Eigewicht. Otididae und
Cuculiformes nicht dargestellt, nur im Text erwähnt.
Kurven HerwRroTHs ihn erkennen lassen. Solche Diagramme bieten also doch mehr
als HEINRoTH (1922, S. 229) angibt, wenn er sagt, daß sie überflüssig seien, weil wir
„daraus nur Selbstverständliches erfahren, wie z. B., daß ein Strauß ein absolut größeres
Ei legt als ein Emu oder ein Kolibri‘. Weniger deutlich, aber präziser ergibt sich alles
aus den Zahlenwerten an sich, in Huxreys ‚Table II“. Das gilt aber natürlich auch
für HEmRorss Zahlen.
HEINRoTH stellt (1922, S. 276f.) sehr interessante Daten über Weibchengewichte
und absolute Eigewichte zusammen. Innerhalb von 8 Familien und anhangsweise
zweier Ordnungen steigen hier die absoluten Weibchengewichte einiger Gattungen,
leicht abgerundet und manchmal gegenüber HEINROTH verändert, auf das 3,3—92fache
der leichtesten Einheit. Wie steht es nun mit den Eigewichten?
Es verhalten sich innerhalb der Familie die Weibchengewichte von
Podiceps (bei PETERS Colymbus) nigricollis (300 g) : ©.
grisegena (600 g) : ©. eristatus (1000 g) wie 1.220233;
dagegen ihre Eier (21 g: 30,5 g: 39,5 g) wie 221,9;
Anas crecca (300 g) : A. platyrhynchos (1000 g) wie 1:3,3;
dagegen ihre Eier (26,5 8:54) wie 1:2;
Tetrastus bonasia (400 g) : Lyrurus tetrix (800 g) :
62 Mathematischer Teil
Tetrao urogallus (2500 g) wie 1:2:6;
dagegen ihre Eier (19g : 35,5 g:: 53 g) wie 1:1,9:2,8;
Plautus alle (160 g) : Fratercula arctica (650 g) :
Uria lomvia (1000 g) wie 1:4:6;
dagegen ihre Eier (28g : 64 g: 106 g) wie, 1:29.25
Dendrocopos minor (21 g) : D. medius (55 g) : D. major
(80 g) : Dryocopus martius (305 g) ’ wie 1:2,6:4:15;
dagegen ihre Eier (2g:4,3g:5,7g:11,8g) wie 1:2:2,6:5,4;
Ereunetes pusillus (30 g) : Erolia ferruginea (60 g):
Tringa totanus (130 g) : Limosa limosa (240 g):
Numenius arquata (760 g) wie 1:2:4:8:25;
dagegen ihre Eier (6,9g:: 12g::22,3g:39g: 76 g) wie 1: 1,7: 3287 22
Sterna albifrons (40 g) : Larus minutus (125 g) : L. ridi-
bundus (250 g) : L: argentatus (1000 g) : L. marinus (1500 g) wie 1:3:6:25: 37;
dagegen ihre Eier (9,6g :19,7g:37,5g:92g:117g) wie 1:2 :4- 9722
Columbina pieui (50 g) : Streptopelia turtur (147g):
Columba oenas (280 g) : C. palumbus (500 g) : Goura cristata
(2000 g) wie 1: 3:6: 1022
dagegen ihre Eier (3,4 g :8,2g:16,7g:18,9g : 49,8 g) wie 1:2.4:5: I
Innerhalb derselben Ordnung sind die Unterschiede noch größer:
Acrocephalus seirpaceus (13 8):
Turdus merula (100 g) : Corvus corax (1200 g) wie 1:7,7:92;
dagegen ihre Eier (1,75: 7,2g : 28,8 g) wie 1:4,1: 16,5;
Oceanodroma leucorrhoa (45 g) : Fulmarus glacialis (680 g)
: Diomedea exulans (7500 g) wie 1:15: 166;
dagegen ihre Eier (10 : 98 : 455 g) wie 1:10:46.
Nur wo in einer Gruppe auch kleine Eier vorliegen, hat bei den kleinsten z. B. der
doppelt so große Vogel ein doppelt so großes Ei. Im übrigen ist die Proportion gestört.
Ergebnis: Die Eier werden schwerer, wenn die Weibchen schwerer werden, aber lang-
samer; nur bei den kleinsten Arten einer Gruppe ist eine Verdoppelung des Vogel-
gewichtes fast mit einer Verdoppelung des Eigewichtes verbunden.
Zur Erklärung dieser Erscheinung führt HuxLey (1927, S. 462) aus: ‚„Entscheidend
für die relative Eigröße scheinen zwei entgegengesetzt wirkende Prozesse zu sein,
einer (vielleicht von biologischem Vorteilim Kampf ums Dasein), welcher das Wachstum
des Eigewichts im linearen Verhältnis zum Körpergewicht begünstigt, und ein anderer
(vielleicht die physiologische Schwierigkeit, die Masse der an sich schon riesigen Eizelle
noch zu vergrößern), welcher das Anwachsen des Eigewichtes einschränkt, so daß es
in einem linearen Verhältnis zur Oberfläche (oder zum Körper oder zum Ei) erfolgt“.
Bei der Entstehung des so verschiedenen Verhältnisses zwischen der Größe von
Vogel und Ei werden außer dem von Huxrey angeführten Dilemma auch der Lege-
abstand, die geographische Lage und das Klima des Brutgebietes, sowie noch un-
bekannte innere Ursachen mitgewirkt haben. Eine solche könnte der Umstand sein,
daß im Laufe der phylogenetischen Entwicklung ein urtümliches Gebilde (Skelett, Ei)
offenbar sehr viel längere Zeit zu seiner Änderung braucht, als die äußere Erscheinung
der Tiere. Da könnte beim Größer- oder Kleinerwerden der Vögel das Ei als das Ur-
sprünglichste nachhinken, sich länger in seiner seitherigen Größe erhalten und dadurch
dann kleiner oder größer sein als bei vergleichbaren Arten und Rassen, deren Größen-
entwicklung die entgegengesetzte Richtung nahm oder stillstand. Wogegen mir nicht
zu sprechen scheint, daß die künstliche Züchtung auf große Eier beim Hausgeflügel
in verhältnismäßig kurzer Zeit zum Ziele führt. Die natürliche Veränderung geht
unvergleichlich viel langsamer vor sich.
63
„un :aognagqgsjoopaoA [PL unz (z ‘+ JIW :aOyNIqyTO9PAOA “YUL :AONIOUZIRIT (1
|! 66008 FF L6T 9°9 OF 991 8% HRPTUOHTRT pun orpLagdmoay
niit 09350006 F&ell G‘9 69 ee HRpıyeuy
98 068% 068% p°9 T 79 (»nnb.4o7 punnyyp) Yeprwryuy
778 091-0087 za 6° q LS -0%7 OBPIYFTULOTSSOAU LT,
IE 00030009 &19€ 08 8 ge 77 HRPILUOHN)
6% 09T 009% GHILl 67 (01 08-88 HRpropay
5 o—g£ 0007 0007 gie T GG (pburyun nbunyuy) gepsuryuy
"so De 0980088 ger 0% & E9 0% ORPIORLODOAOLLUA
= T 0098 0098 0'E T 0°E (snupssng sn4opr) Pepıpng
ö e—7Z 0006 0006 07 T 0'z (sn7990.190u0 snun99]9.]) PrpruBoopad
ri I g9F g9# 035 T 0'773 (D0Y.1109n9] PWoıwpounsag) PepıyegoapÄH
= |! 089 089 Frl I vr (soppıonyb snumwpn,J) Pepınejfoooag
iv I 00%4 0084 0'9 T 09 (sunjnxa DapaWworT) RrPPPIWOIT
= 97 8110007 LSP 8'C 9 080% (Oepıpodıpıpozg 99994) aupıqwA]oN)
B G 0057-0068 099% LS G 0u-E7 oRPILAeH)
a Zr 007 E— 00088 00031 07 19 09 ET sRprosruoydg
Ol 96 — 0083 107 g, 9 TIT-CH | ORpruwun]
- a | 000% 000% 27 T beig oRpıoAuogdy
& 8I=L 00007 00007 GT T G7 ORPIISITWOLCT
= Del. 00088 00088 8°T 8 8T ORPILIENSE/)
5 GT 07 00005 00003 FE T p'e (sSU9959g]D BuDanıawn nayy) OrPIOy
gr 8ST-TI 00006 00006 87 1 87 (SnJ9W»9 oryn.4gK) Pepıuorygynags
©
-
I AOINıg uosse]
er ane) POP. | Gromag | (lognıg | pun
999]9H) gay 7 Se Sur -19 A -U9HFO -UOFO uoJaVy
u you UUOM) yyruyos pun pun pun UOIKTEFIO
yezasıq 3 ur -ypanp d9YDOU d9ypoy | aoyyanıy op UT
OfeWLIou Sunyurayag -uoL]LUIe 7 -ISoN -ISON SON iyez UOLYELIe A
ö 19p 4yormaH % ur gnuposppmng-gy - 9a (gay oggpeFIo "Azg) orrug,g
U9J013959709 pun
uonagyJo9pAa9 A “wngaoryonjsJsoN UoA Zunsnyarspondog Fur HyuaLMaSuogIgTo AM PSTıoyaanz pun 9Yyarmasıyz HAEIOY 9 OIPAEL
x 8-17 07 0081 LEPF +6 PT Gl Fo 8L ORPLIBT
RG 009 004 009 3 001-6 RPILIWALOD.IDIS
83 08 08 0°07 L’6 T 0°07 OBPIPIUOLy
r Ger GEI GIF ji G‘TT OBPLIODOUTLLT,
„6 L8 L8 g'T7 T Pe HRPIOAARIK)
8773 007 0814 gLg 88 G 86-19 ORprurgamgr
T 083 085 ++0'9%+ T er HRPrPwWoACT
r 07-97 & 91 G 2OL-—-LOT oRprpodorwpeyg
12 09T —0LE 093 TET7 G a OR} ORPLIASOATAAMOOY
N TE E09, 21 81 65 8‘La—9'6 oRprowdojoag
6 GE008 081 EL el #13-T'21 HRPILIPRAIRU)
9-73 009 009 0'8 T 08 oRpıpodoprworyy
r 09T 08T 0'9 T 0'9 ORpPrUVORp
= 01 0890008 098% gr 6 LLT0'E ORPIPIIO)
ar 876 OEL T OELT +Fr T pr (pings110 Dum.ıny) ARpruneLıv,)
A I 008 008 GP] T G'pI ARPIIOgDOUÄUM
en 91-7 09—00L zIE For 6 8'971 -9'4 oRpırpexy
a &L 0007 0007 s‘r 1 sp oupırydosg
* G 00980008 0909 07 q 79-08 ORPMIY
a BG 0709 LP e'6 6 011-8 ORPIOTLINT,
ee) 81-97 0098 009€ 03 T 03 ORPIPLISBOION
8 61-6 00010951 GT nV G er oRpıprumN
A 08-3 GP —0008 908 9°g 29 LET —9'3 ORprunıser.z
61-9 09570956 sort! 07 & 09-43 ORPTUORAIOL,
876 0990098 0081 06 2 601-274 RpmeN)
21-9 009008 1 0907 H+8°PT q GLI—g'21 rpııpodudon
aoynadq uosseg
(4gpeFıo -I2[99p („aoynaqg | („aognag pun
Er) 29) gay T sıe 3 ur -IOA -UOHO -UOFJO uoylıy
wur ayow uuoM) yruyos pun pun pun UOIKTRJIO
[ywzaorg 3 ur -yoanp AO7OOU aoyooy | aoyyon op Yu
OTLULIOU Junyuramyag -UOTLUUR. -ISON -I8SON -ISON Iyez UOTPRLIB A
5 19p Yydpımon) %, ur gpugyosyaane-IM OT (Jay HJRFIO "Azg) Ortung
9 O][OqRL, Funzgosjı1o,T
De
Fe
CH DER O0LOGIE
x
©
HERAUSGEGEBEN UND ERGÄNZT VON
Prof. Dr. WILHELM MEISE =
. Zoologisches Institut und Zoologisches Museum Hamburg ARE Kt
Ber I, DER" 3 I ; ‘ AS EN E
h St ; ‚ Lieferung 42
4
\ ; H
x
” ‘ pe
; 1
u
ae v
4 »
ı x
+ 4
ef rn - zu
y
I
g Ag - -
“ fi ,
vi
in
hr
rn y RT
B ö S
sAy
N ER
R z N
[1 3 x
\
: 1%
N
r,
{ j
K” L
5.
P a: |
\
% =
.. $ $ 2 j
\ x \ MR P ” g
AKADEMIE-VERLAG - BERLIN ER
| joa an. | N ar ne
x x
ni u. ne % N u BP PEN * 4
“ ; ‚ 2 ” Ne . Fe
RE ER NE RTAR N 2 Er Fe
h Hr A E v : 2 *
Pe‘ N “ #33 ET BER A = Ä -
Pk Are + BR EIER I A ER TEE KR:
em h « 3
u . I x 2 u Dreh >
ä r BT . - Re .
P> 4 u F > et 7%
" “ “u t ” 2 77 ie
ir ; { 7
2
Seita6s 128 "aus
INHALTSVERZEICHNIS FÜR DIE LIEFERUNG #2 IR Dr
a4 . . u a: er)
E Bis Schalmdicke (d) der Voneliier‘: ort nn De EA
5. Die Reyschen QuotientenqundQ ........ A an Kurs
6. Die Oberfläche (©) des Eies . ... . . REN NE Fre Br “sc
7. Di kreis und der kin Baniäfank (U Kran BER wand Re N
8. Das spezifische Gewicht (T) der Eischale . . . ....... 2.2 220. FL 3
9. Das spezifische Gewicht (T)) des Vogeleies ..... 2:2. 22.200. ee"
e | |
4 ei
/ -
Erschienen im Akademie-Verlag Berlin, DDR -1086 Berlin, Leipziger Straße 3
© Akademie-Verlag Berlin 1985
’ Lizenznummer?: 202 - 100/551/85
Printed in the German Democratie Republie % ”
Gesamtherstellung: VEB Druckhaus „Maxim Gorki“, 7400 Altenburg
LSV 1365
Bestellnummer: 763 245 1 (3037/42) RE
00950 pi
‘ ‘ 4 Y e%
“ r j r
-
e
6
ON)
elaal: la
as
[an En Sineoiile)
aaaaaeın
|
Atom on man
ser: il Re
a aaammaomaana
Berechnungen für Zwecke der Oologie
(oe)
Kal
ann
[0.0]
YYawoanmHa©99©0%
aber]
NSermr-nm
0°TT -0'FF ET or A SR ORprurpumn.a
0'327 009 SHE e‘7J 0% E°°I 89 9rpıpney
09T BEL 0'sE ETI L 17186 sRpısunoy)
06-7 FE 18T L'97 g 675871 9rpradtg
87 —0'L8 rIe +0°PI LP 982 #8 IRpruumakT,
04871 g'c6 es & go rL 9rprygig
GL-T719 093 ET 66 077-901 OBPILIBOTULIO J
31-978 L'61 691 II cs Ic 01 RPILIBuamg
ra sTE 76] 97 212 86 SRPIIde[0001PUuOCLH
71 908 907 89 I 00T 07 SRprarg
098 098 G7 I GH 9rpseydweg
SG 85 0'8T I 0'817 HRPLIOeOIPUF
1 6% 8'87 90T ii 637 9'8 oRpruogden
86716 Gıg S’ıl 2 N, IRPIUODONEG
Ts Ts g'0g T E'0z orpımmaped)
TET 0088 81 0°9 97 9°07 -9'3 SrPOIBONg
0904 09 (097 & (02 z oepıdndn
00T E97 IT cor 2 221-P1 HrPIIOR.1ON)
617 88 G'sg (u Z 1’STE—-O TI 9eprdorop
OLT OLT 12 T TH OBPIIOWON]
06 0'09€ 8°C6 ger 7 2223-88 oRprurpao]y
09-H#L L9 821 Z 0°ET —-9°21 9RPIUOSOLT,
ei Gy &9 ji 9 ORPILION
IE g7 097 2 SIT Gel SEPIIIYU9OLL
09 09 ET T Alt rpımwordıuoy
L—001 9°78 gL 9 00709 arpıpody
09—08 £'89 +3. 01 & et 16 SRpıapnwnden)
gL—0087 #69 48“ SI SET 68 SBPIaLIIS
GEB 088 187 SL 3 E65 89 orpruogAy,
081 958 06T ger F 30341 (1OMAg9S9J9S) Sepıpnany
087056 88 +9°G 8 BRZIEE (usyıseamedgnasg;) Sepıpnany
075-0007 059 IR 3 00T 8°C oRpıseydosnyr
&1 0907 695 G'g g5 g’ET—E'E orpreggisq
GE 0008 69% +9‘q LE L'60'8 Seprqtunjog)
06T =0TG 895 89 8 78 —7'4 SEPI9019IT
097 0007 719 g‘TJ : l N) 9epIaly
zZ
2. Lieferung
5 Oologie, 4
u au 4 Fa [1 - r Sn 23 < un
Pr ige es 2
9-3 SL-E77 601 9'707 6r "05-0 SRpImaeg
1 0-3 0°'6-8'LL 99% 671 er I‘LTI-23'9 orprdnengs,
9-7 0'86'89 6°76 GT 88 9°8T—0'8 SRPIZLIOGUIT,
7-3 L— 291 0'8E 871 99 E87 09 oRpıdeydırom
RE 8—8'71 901 rar | I 18T -#°6 SRprdo1agsoZ
@-1 1'708 #6 71 63 ’ | 808-8°6 ORPITULIBYOON
#3 1'979 871 PET 8 077-871 9RPIOBOLCL
ee) 38-61 TOT GT 9 a SRPIIYIAO,)
8-7 LTR g'6T L’Or ja SRR=0L BprMIS
1% 01- Er SH oT 87 STE SRpLIBT
Sa 09-207 g'8 g‘or gq g‘31-1'8 ORpızuoM
u 7 g‘g—c'8 89 s’TIr F VEIT FOL orpıpeuıdoy
az! G'G— 10T Fur ger EL 0°18—T'8 oRpIdeamosny
= 9-8 9-37 671 +9°ET L6 79° —-T'8 ORPITAJÄS
& 9-8 g‘9—GPI 9°TT CT 69 #°8T—-0°9 9RPIWULT,
u 9-8 0T—8LI E71 s‘0T 6L 18T —-0'8 SRPIPANL,
.d 9-8 gLTI—-0F 077 601 r er) HRpıpjpunag
= 9-7 Rd Rd L'6 j L'6 SRpLWI
= 8-3 8-67 rer 6°ET 8 L’ST— ‘IT 9Rp1YAPoJSoLL,
g 9-7 9—g'96 O'LL #9 iö e8—9%7 RpIaur)
“ 9-8 Lg GLS 9°9 I : 9°9 SRprpiodqwog
u 2=& 80-91, Fr 36 &7 SHZFL ORpIuv’]
a @ PT 65 cz oT G 6:77>0:01 SRpruaı]
EZ g9T—9g g'LE 201 LI IMI=ul RPNOUOUDAT
g—g OT E11 For Si 6 9°91—g‘9 orpiöwydodum;)
9-7 OFT —0'29 0'873 FI 77 A RPIJIORION
AOINALA UOSSEH
(IJeF1d -PD9P („oynaq | (Kong pun
spe) ers) Ya T Se Sur -IOA -UONO -UOHNO) U9LIV
wm ayatwı UUOM) J1uyos pun pun pun U9JLTEFIO .
IURARTIGE su "mp Id9N9OU IONDOU d9yyonyJ J9P % ut
IJLULIOU Sunyurnyog -uoljrwuv] -ISON -ISON -ISON IuezZ UOIYELIR A,
ö 19p IydınoY) % ur guuypSsWMLT-HA Sy (41V 94RFIO "AZg) OrjrwurT
66
9 O]PqRL FunzI9sI1oT
als
aa
Berechnungen für Zwecke der Oologie
|
a
ler lei, rsl.e
aaywoamann
|
SE SS SS SS A DA NY OD ND
8780051 7998 +69 09 26-77 HRPIA.LO/)
OTT 667 s’6rT 0'8 al 8°IT -8'9 HRPIoBsIpeaug
607-078 1'sg1 SIT 07 9°7T—0'8 ORPIDULÄYLOUOLLIT
908 F7E 1'881 NE N L’60'9 HRPIOLRL)
008 8'Er 9'98 g'6 L O°LT =4'8 HRPrUNEJuYy
6641 -9'qL8 9'967 09 & 91-9 HRPLUNR.LH)
6897 s'gq 07 0% gr -gL OBPLINAOICT
L'99 — 9'877 g'E8 76 6 07 =8'9 HRPIOLIO
TE -G17 6°TIT 64 76 61165 Rprumgg
908 -0'783 ET +78 SE 811 #7 ORPLIOIOT
L’OT GP °r% ot 19 sF1I-Tı SRPIOAOLT
E97 977 ra 8°6 99 Fr CL RPIPILIISCT
0'8—1'89 ggg 007 EL 997 —0'9 ORpıppouref
60T —8'87 6'817 HT I 6°L1 8'771 ORPFUOAATA
5*
68 Mathematischer Teil
IV) Relatives Eigewicht (RG). Mit dem Begriff der relativen Eigröße RG hat sich
HEINRoTH (1922, S. 229) von dem Vergleich der absoluten Eigröße unabhängig gemacht
und an deren Stelle das in Prozenten des durchschnittlichen Weibchengewichtes aus-
gedrückte Gewicht des frischvollen Eies von durchschnittlicher Größe gesetzt, also
Eigewicht : Vogelgewicht.
(39)
Der Wert von RG schwankt von 1,3%, bei Aptenodytes forsteri bis 27,8%, bei Erolia
minutilla. Im Gesamtdurchschnitt aller Arten ergeben sich nach SCHÖNWETTER
8%, (ebensoviel wie für Rg, siehe oben S.44). Mit der Zunahme von rund 500
auf rund 2000 RG-Werten stieg dieser Durchschnitt auf 9,3%, bei den etwa
516 Formen der Nonpasseriformes im Band I und auf 11,1% bei den etwa 1400 Formen
der Passeriformes in den Bänden II und III. Gesamtdurchscnitt nun 19,6%.
Abnahme von RG bei wachsendem Weibchengewicht. Die Werte für das Relative
Eigewicht nehmen im Gegensatz zu den Relativen Schalengewichten (S.46) mit
wachsender Vogelgröße ab. Im einzelnen aber besteht ein großes Durcheinander,
um dessen Klärung sich umfassend als erster HEINROTH (1922) bemüht hat. HEINROTH
nahm, was (s. oben S.60) wichtig ist, die Auswertung über das Relative Eigewicht vor.
Innerhalb vergleichbarer Einheiten, zum Beispiel in Familien. Er formulierte die
Regel, daß die Eier relativ um so größer sind, je entwickelter der junge Vogel zur
Welt kommt, so bei Nestflüchtern. Diese Regel gilt aber nicht ausnahmslos; sie gilt
z. B. bei Apteryc und Megapodius, denn deren Eier sind im Verhältnis zum Gewicht
des legenden Kiwis und Großfußhuhns groß; aber sie gilt nicht bei einigen kleinen
Singvögeln (Oscines) mit RG bis 17% und bei den Röhrennasen (Procellariiformes)
mit RG bis 22%, die relativ große Eier haben und geringen Entwicklungsstand beim
Schlüpfen, auch nicht beim Rebhuhn (Perdix perdix) und Haushuhn (Gallus gallus
domesticus) mit relativ kleinem RG (— 7%) und weiter Entwicklung.
V) Relatives Eigewicht im System der Vögel mit Berücksichtigung von Nestflüchter-
tum und Verdecktbrüten. Beim Vergleich der RG aller Familien, für die Werte vor-
liegen, stellen wir die Werte für Nestflüchterfamilien und für Familien, die in Höhlen
oder an anderen Verdecktstellen brüten, in gesonderten Spalten’zusammen, reservieren
auch eine besondere Spalte für die Gelegegröße innerhalb der Familien (Tabelle 6, S. 63).
Erst bei der Behandlung der Schalendicke im nächsten Abschnitt (S. 96) wird
das RG selbst in Beziehung zur absoluten Vogelgröße gesetzt.
RG von Nestflüchtern und Nesthockern. Da Nestflüchter weiter entwickelt aus dem
Ei schlüpfen als Nesthocker, muß das RG bei jenen größer sein als bei diesen, was
nicht so deutlich, wie es sich im Schönwetter-MS ergab, mit aktualisierten RG-Werten
für die bei Schönwetter angeführten Familien zu bestätigen ist: Bei den Nestflüchtern
beträgt RG laut Tabelle 6 für
Tinamidae 1,89
Anatidae 6,5%
Megapodiidae 14,8%,
Phasianidae 5,6%
Rallidae 10,4%
Otididae 4,5%
Charadriidae 17,3%
Scolopacidae 18,2%,
Laridae 14,9%,
im Durchschnitt 11,3%
4
Berechnungen für Zwecke der Oologie 69
(Für alle nesthockenden und platzhockenden Familien der Tabelle 6 ergibt sich ein
Durchschnitts-Familien-RG von nur 9,9%. Hrsg.)
Das RG-Minimum sehen wir bei Gennaeus lineatus sharpei mit 2,6%, nur wenig
höhere Beträge auch bei einigen anderen Fasanen. Aus der Reihe fällt das Rebhuhn
(Perdix perdix) mit nur 3,8%. Seine große Gelegezahl (bis 15 Eier) gleicht wohl aus.
Etwa gleichschwere andere Hühner (Phasianidae) haben bis 7%. Die relativ schwersten
Eier legt unter den Nestflüchtern Erolia minutilla mit 27,8%, des eigenen Gewichts.
Die verbleibenden 27 Familien (von Schönwetters MS-Familienliste) umfassen die
Nesthoeker mit im Durchschnitt nur 8,15%. Sie haben also relativ kleinere Eier als
die Nestilüchter. Minimum: 1,3%, bei Aptenodytes forsteri, Maximum 20,8%, bei
Crotophago major. Nach der Tabelle 6 erhält man 8,3% (Hrsg.) — Zu beinahe genau
denselben Zahlen führt es, wenn man aus Angaben bei Mararsch (1949, S. 62, 64, 65)
für 81 Arten die Durchschnitte berechnet. Es ergeben sich 11,0% als RG für 41 Nest-
flüchter und 7,35%, für 40 Nesthocker unter ausschließlich paläarktischen Arten.
Auf Seite 69 stellt derselbe Autor je 12 Arten gleiehsehwerer paläarktischer Vögel
beider Kategorien mit ihren RG einander gegenüber. Die Durchschnittsberechnung
erbringt 11,3%, für die Nestflüchter und 6,9%, für die Nesthocker. Die drei (vier, Hrsg.)
verschiedenen Zusammenstelliungen ergeben also dasselbe Resultat: Arten mit höherer
Embryonalentwieklung haben relativ größere Eier, wenn auch nur im Ver-
erhältnis 8,3: 9,9%. Es gibt kleines und großes RG bei Nestflüchtern und -hockern.
RG bei Verdecktbrütern (,Höhlenbrütern‘‘) und Offenbrütern. Der Begriff ‚„Höhlen-
brüter‘“ wurde unter Einbeziehung von Familien, deren Nester oben nicht offen sind,
weiter gefaßt. Es haben als RG die Höhlenbrüter
Megapodiidae 14,8%
Psittacidae 6,5%
Aleedinidae 13,6%
Picidae 6,8%
Paridae 14,3%,
Nectariniidae 14,0%
Ploceidae 9,6%
Im Durchschnitt 11.5%.
Das Ergebnis bezieht sich auf nur 7 Familien, wird sich aber bei mehr kaum grund-
sätzlich und wesentlich ändern. (Die übrigen 26 Familien einbezogen, lautet für 33
Familien von Höhlenbrütern das Durchschnitts-RG 11,1%. Hrsg.)
Relativ kleinste Eier bei den Höhlenbrütern: Ara ararauna mit RG = 3,3%, und
Dryocopus martius mit 4,0%. Relativ größte Eier: Megapodius eremia (gleichzeitig
Nestflüchter!) und Tanysiptera sylvia nigriceps mit 15,7%.
SCHÖNWETTER (MS) fand bei 29 Familien von Offenbrütern dagegen im Durchschnitt
nur RG = 8,6%, also kleinere Eier, relativ kleinste Eier bei den Offenbrütern Dro-
micerus mit 1,5%, (ähnlich die übrigen Straußenvögel außer Apteryx), Pelecanus und
Phalacrocorax carbo mit 2,0%, und Corvus corax mit 2,4%. — Relativ größte Eier:
Sterna anaethetus mit 25,4%, und Erolia minutilla mit 27,8%. (Alle Offenbrüterfamilien
der Tabelle 6 ergeben aber im Familiendurchschnitt nur RG = 8,1%, wodurch hier
der Unterschied zwischen Höhlenbrütern und Offenbrütern auf 11,1:8,1 vergrößert
wird, im Gegensatz zum Ergebnis bei Nestflüchtern und Nesthockern. Hrsg.)
VI) Schwankung der RG einiger Familien, nach dem Familiendurchschnitt geordnet.
Berechnet man das durchschnittliche relative Eigewicht für die einzelnen Familien,
wie es im vorigen Abschnitt geschehen ist, und ordnet die Werte vom kleinsten zum
größten, so ergibt sich wie die Liste (S. 70) zeigt, daß nicht nur Riesenvögel, sondern
auch Pelikane und Truthühner (Meleagrididae) die niedrigsten RG zeigen, daß die
\
\
70 Mathematischer Teil
und Ploceidae etwa gleich liegen, die brutparasitischen Cuculidae mit 5,6% weit
unter die selbst brütenden (13,3%) geraten sind, und schließlich die Ptilonorhynchidae
und Paradisaeidae, einmal als Einheit betrachtet, 1,8mal so großes RG aufweisen
wie die ihnen nahestehenden Corvidae (9,6 gegen 5,3%).
Relative Eigewichte, nach ihrer Größe im Familiendurchschnitt geordnet:
RG
1,5—2,5%: _Dromiceiidae 1,5, Struthionidae, Casuariidae 1,8, Pelecanidae, Meleagridae 2,0
3.0—3,4%: Rheidae 3,4, Sulidae 3,0, Anhingidae 3,3, Ciconiidae 3,0
4,0—5,3%: Spheniscidae 4,0, Phalacrocoracidae 4,0, Ardeidae 4,9, Tetraonidae 4,0, Numididae
4,3, Gruidae 4,0, Psophiidae 4,8, Cariamidae 4,4, Otididae 4,5, Ramphastidae 4,5,
Corvidae 5,3
5,4—6,3%: Gaviidae 5,7, Podicipedidae 5,8, Diomedeidae 6,0, Threskionithidae 5,9, Anhimidae
6,4, Anatidae 6,5, Aceipitridae u. Falconidae 6,6, Phasianidae 5,6, Jacanidae 6,0,
Pteroclidae 6,8, Columbidae 5,6, Psittacidae 6,5, Cuculidae (Brutparasiten) 5,6,
Coliidae 6,2, Bucerotidae 6,0, Picidae 6,8, Bombyeillidae 6,6, Cinclidae 6,4, Aegithalidae
6,8, Grallinidae 6,0
7,0—11,9%: Tinamidae 7,8, Cracidae 9,0, Turnieidae 9,3, Rallidae 10,4, Haematopodidae 8,0,
Recurvirostridae 11,1, Burhinidae 8,3, Glareolidae 11,5, Thinocoridae 11,5, Chionididae
10,0, Stercorariidae 9,7, Alcidae 11,5, Musophagidae 7,8,Tytonidae 7,8, Strigidae 7,8,
Caprimulgidae 10,2, Apodidae 7,6, Hemiprocnidae 11,7,Coraciidae 10,2, Upupidae 7,6,
Capitonidae 10,6, Pittidae 8,3, Cotingidae 11,3, Alaudidae 11,3, Hirundinidae 10,2,
Motacillidae 11,4, Campephagidae 11,8, Pyenonotidae 10,2, Irenidae 11,0, Laniidae
9,2, Mimidae 9,7, Prunellidae 10,9, Turdidae 10,8, Timaliidae 11,5, Remizidae 8,5,
Certhiidae 10,1, Nectariniidae 9,4, Zosteropidae 10,6, Thraupidae 11,9, Fringillidae
9,8, Estrildidae 9,6, Icteridae 8,4, Sturnidae 7,9, Oriolidae 9,1, Dieruridae 10,2,
Artamidae 9,5, Cracticidae 7,1, Ptilonorhynchidae 11,8, Paradisaeidae 8,0
12,3— 18,2% : Procellariidae 14,4, Megapodiidae 14,8, Rhynochetidae 14,5, Charadriidae 17,3,
Scolopacidae 18,2, Phalaropodidae 16,2, Laridae 14,9, Cuculidae (Selbstbrüter) 13,3,
Trochilidae 16,0, Alcedinidae 13,6, Momotidae 14,1, Meropidae 14,9, Bucconidae 17,8,
Indieatoridae 13,0, Dendrocolaptidae 15,4, Furnariidae 16,9, Formicariidae 15,3,
Tyrannidae 14,0, Pipridae 16,7, Troglodytidae 13,9, Sylviidae 13,6, Muscicapidae
17,4, Paridae 14,8, Dicaeidae 12,8, Meliphagidae 12,8, Emberizidae 12,5, Parulidae
15,6, Vireonidae 17,3
19,5— 25,0% : Apterygidae 22,0, Hydrobatidae 25,0, Dromadidae 25,0, Galbulidae 20,5, Sittidae 19,5.
Die gleichgroßen RG bei verschiedenen Vogelgrößen findet, wer sie braucht, in
HEINnRoTHs (1922) Diagrammen durch Gleiten über die senkrechten Linien, wobei
436 Arten erfaßt werden können. Unsere größere Zahl von 2000 Arten läßt sich nach
dem Text in den Bänden I—III (Teil A) auswerten.
VII) Variation der RG innerhalb einiger Familien. In den folgenden Abschnitten
gehen wir umgekehrt vom Weibchengewicht aus und beginnen wieder mit der Familie.
Innerhalb der Familie nimmt, wie schon gesagt, regelmäßig das RG mit abnehmender
Vogelgröße zu. Durch kleine Unregelmäßigkeiten im Verlauf und manchmal auch
größere erkennt man diese Gesetzmäßigkeiten in den RG-Angaben des systematischen
Teils (A) manchmal nicht wünschenswert klar. Deshalb lassen wir in der folgenden Liste
jene Abweichungen einmal weg und erkennen die Tendenz nun deutlich, das anfäng-
lich langsame, dann schnellere Wachsen der RG bei abnehmender Eigröße.
Bei den kleinen, bis 100 g wiegenden parasitären Kuekucken (Cuculidae) entspricht
der Verlauf der Regel, daß die kleineren Arten die größeren RG haben: G-/RG = 100 g/
3,2%, 46 g/6,8%, 40 g/6,2%, 32 g/6,2%,, 20 g/7,9%, beginnend mit C’ueulus canorus
(Bd. I, 8.535). Bei den größeren Arten scheint der Fall umgekehrt zu sein. Leider
Berechnungen für Zwecke der Oologie 71
Vogelgewicht und Relatives Eigewicht
Anatidae (aus Bd. 1, S. 118£.): Psittacidae (aus Bd. TI, S. 509):
Plectropterus gambensis (5000 g) 2,870 Ara ararauna (1 000 g) 3,3%
Anser fabalis (3 100 g) 4,1% Amazona aestiva (400 g) 4,5%
Somateria mollissima (2000 g) 5,5% Nympkicus hollandicus (100 g) 5,1%
en Se x er 2 es nigrigenis (40 g) 8,1%
orna tadorna g 105 gapornis cana (30 g) 8,9%
en Be nn g) a Micropsitta bruijniüi (14 g) 13,60,
A ’/0 Turdidae (aus Bd. II, S. 367#.):
Scolopaeidae (aus Bd. I, S. 389): Turdus torquatus (112 g) 6,6%
Numenius arguata (760 g) 10,0% Turdus merula (98 g) 7,4%
Limosa limosa (240 g) - 16,2% Turdus iliacus (62 g) U;
Tringa totanus (130 g) 17,2% Catharus ustulatus swainsoni (38 g) Sl
Calidris canutus (110 g) 17,3% _ Oenanthe oenanthe (26 g) 10,3%
Tringa ochropus (80 g) 19,4% _ Luscinia megarhynchos (22 g) 12,1%
Lymnoeryptes minimus (62 g) 22,6% Erithacus rubecula (16,5 g) 14,5%
EN hypoleucos (48 g) 26,0% Cercomela familiaris galtoni (16 g) 15,2%,
a nuhlla fi % ;
ee 21,8% Gorvidae (aus Bd. TIT, S. 698):
Columbidae (aus Bd. I, S. 479£.): Corvus corax (1200 g) 2,4%
Butreron capellei (500 g) 3,0% Corvus corone (489 g) BR 4,0%
Ocyphaps lophotes (225 g) 4,0% FPica pica (211 g) 4,1%
Ben er ve 22 Nucifraga caryocatactes (180 g) 5,9%
ıınopus ınsolitus ag „E/o
Streptopelia humilis (75 g) Day
Gallicolumba beccarii (60 g) EHE
liegen nur die Angaben vor für Eudynamys scolopacea 220 g/4,1%, und Olamator glan-
darius 135 g/7,3%. Das unzureichende Material an Vogelgewichten läßt keine end-
gültige Schlußfolgerung zu. (Doch spricht bei den Selbstbrütern alles für die Zunahme
des RG mit fallendem Go: Centropus ateralbus 325 g/7,5% ; Crotophaga major 150 g/
20,8% ; Guira guira 120 g/17,5%. Hrsg.)
Sehr anschaulich sind, wie mehrfach gesagt, die 3 Blätter mit graphischen Dar-
stellungen, die HEINROTH seiner Arbeit (1922) beilegte. Daß sie RG-Werte zugrunde
legten und nicht die absoluten Eigewichte G, die HEINRoTH für überflüssig hielt,
wurde oben (S. 60) besprochen. Doch begründen sie das Ergebnis seiner Forschungen,
wonach innerhalb einer Gruppe RG mit abnehmendem Go erst langsam, bei den klein-
sten Arten aber sehr schnell ansteigt. HuxLey (1927, S. 462) sagt irrtümlich das Gegen-
teil, da er, wohl infolge eines Druckfehlers, HEINROTEH falsch zitiert. Dementsprechend
ist an diesem Klein-Go-Ende die Kurve der RG gebogen, im übrigen mehr geradlinig,
ähnlich wie bei einer Parabel. Das gilt auch für Familien, die nur kleine Arten um-
fassen. Der glatte Kurvenverlauf kann übrigens unterbrochen werden, um dann von
neuem stetig weiter zu gehen. Zum Beispiel verläuft die Kurve für die kleineren Anatidae
(s. a. S. 71) bis zu 2000 g wie beschrieben, bei 3000 g beginnt aber ein neuer steiler
Anstieg, der allmählich wieder verflacht (Fig. 3). Ähnlich scheint es bei den Podicipe-
didae (bei PErTers 1931 Colymbidae) zu sein, doch liegen für diese zu wenig Angaben
vor, um Sicheres sagen zu können (sinngemäß nach HuxLey).
VIII) Durchschnittliches Weibchengewicht und Schwankung der RG im Gesamt-
system der Vögel. Die verschiedenen RG gleichgroßer Vögel aus verschiedenen syste-
matischen Einheiten ergeben sich aus den Diagrammen von HEINROTH (1922), wenn
man sie die waagerechten Linien entlang abliest, oder aus unseren RG-Listen in Teil A.
72 Mathematischer Teil
Einige Beispiele:
Art G2 RG
Weibchengewicht etwa 600 g:
Colymbus (recte Podiceps)
grisegena 600 2: ' 5,1,
Nyeticoraz nycticorax 750g 4,6%
Bucephala elangula 62585 9,1%
Megapodius eremita 600 8 16,6%
Lagopus lagopus 6005 4,6%
Chrysolophus pietus 550g 49%
Fulica atra 65085 5,6%
Haematopus ostralegus 6008 7,8%
Numenius phaeopus 480g 10,4%
Hydroprogne caspia 500g 13,0%
Caloenas nicobarica 60085 4,6%
Weibchengewicht etwa 1500 g:
Corvus corax 130085 2,2%
Strix nebulosa lapponica 1308 41%
Pandion haliaetus 14008 5,3%
Gallus gallus domesticus 1450g 3,75%
Ardea cinerea 15005 4,1%
Gavia stellata 15008 5,7%
Branta bernicla 15008 5,7%
Aquila pomarina 15008 6,0%
Anser erythropus 15008 6,7%
Larus marinus 150085 7,8%
Alectura lathami 15008. 12,7%
Platalea leucorodia 16508 4,6%
Weibchengewicht verschieden:
Struthio camelus 900008 1,80%
Tetrao urogallus 22508 2,36%
Franecolinus bicalearatus 500g 5,3%
Numida meleagris galeata 150085 2,6%
Vanellus vanellus 200g 13,0%
Philomachus pugnaz 1005 21,0%
Lymnoeryptes minimus 6295 23,0%
Phaethornis ruber 1,729 13,9%
Regulus regulus 3,98 134%
Wie man sieht, ist der Satz von der Zunahme der RG mit der Abnahme des 9-
Gewichtes kein einfaches Gesetz, da es über die in Abschnitt VII im allgemeinen
bestätigte Gültigkeit innerhalb der Familien hinaus bei der Gesamtheit der Familien
nicht zutrifft. Es sprechen zu viele Faktoren dabei mit. Allerdings, ordnet man in
meistens artenreichen Gewichtsgruppen nach dem Weibchengewicht, so zeigt sich ein
stetiges Fallen des mittleren RG von 12,2%, auf 2,1% trotz großen Durcheinanders
im einzelnen (Tabelle 7). Dabei haben kleinere Vögel außer größeren Eiern auch noch
mehr davon im Gelege, worauf wir weiter unten eingehen werden (Abschnitt 3.k., S. 75).
Ergebnis aus Tabelle 7:
1. Nur in der Gewichtsgruppe VII gehören zu dem kleinsten in ihr vorkommenden
Ei auch das niedrigste in ihr vorkommende RG (bei ©. corax) und zu dem größten
in ihr vorkommenden Ei auch das höchste in dieser Gruppe vorkommende RG (bei
Alectura).
Berechnungen für Zwecke der Oologie
Tabelle 7. Gewieht von Vogel und Ei innerhalb der Vogelgewichtsgruppen
Gruppen der
Vogelgewichte
(22)
I. 2-10(11)g
Absolutes Eigewicht
(G)
Minimum
Maximum
des Weibchengewichts
0,345 —
Mellisuga
minima
(2 8)
1,38
Troglodytes
troglodytes
(9.5 9)
Relatives Eigewicht
(RG)
Minimum
Maximum
des Weibcehengewichts
10,5% —
Estrilda
melpoda
(6.5 8)
16,4%,
Cettia
Anzahl
der
Fälle
13
73
Mitt-
leres
RG
Poephila
guttata
castanotis
(12 8)
alpina
schinzii
(50 8)
27,8%
Erolia
minutilla
(23 8)
III. 50—100 g
3,48 —_
15,5 8
Tringa
ochropus
(80 g)
(56,3 g)
22,6%
Lymno-
eryptes
(62 g)
FE Per TTS Gr
IV. 100-200 g
VI. 0,5—1kg
Nymphicus
(100 8)
10,0 8 =
Pica p. pica
(211 g)
19,8 8 =
Corvus
corone
(489 g)
26,0 &
Plwvialis
dominica
(130 g)
73,0 8
Rhynochetus
(500 g)
98,0 8
Fulmarus
Trichoglossus
n. moluc-
CEeNsiS
(170 g)
3,3% —
Columba
palumbus
(500 g)
3,4% —
Phasianus
colchieus
(900 g)
anaethetus
(100 g)
17,1%,
Squatarola
(200 8)
14,4%
Fulmarus
30
79
20/
8,2%
28,8 8 _
(1200 e)
190 g
(1500 e)
9.40 fe
2,49,
Corvus corax
(1200 g)
12,5%,
(1500 g)
Phalacro-
corax carbo
(2,5 kg)
455 8
Diomedea
eculans
20% —
En
6,0%
Diomedea
exulans
7Alk
(7,5 kg)
IX. 10-90 ke
180 g —
Pelecanus
onocrotalus
(9 kg)
1600 g
Struthio
(90 kg)
1,3% —
Aptenodytes
forsteri
(32 kg)
3,4%
Rhea
americana
(20 kg)
74 Mathematischer Teil
2. Nur in den Gruppen VI (bei Fulmarus), VII (bei Alectura) und VIII (bei Diomedea
exulans) liegen das maximale G und das maximale RG bei derselben Art.
3. Im übrigen gehören die 4 Extreme in jeder Gruppe zu 4 verschiedenen Arten.
4. In den Gruppen II, IV, V, VI und IX hat der kleinere Vogel das größere RG,
in den Gruppen I, III, VII und VIII hat es der größere Vogel.
5. (Ein methodischer ‚Fehler‘ ist hier vermieden worden, der in Bd. III bei ver-
schiedenen Zusammenstellungen von RG-Werten zu finden ist (so S. 524). Da wurde
das arithmetische Mittel der Vogelgewichte Go, also nicht nur deren Bereich, mit
dem Durchschnitt der dazu gehörigen RG zusammengestellt. Die beiden Werte Sgo
und Sx« sind aber nicht vergleichbar, wie aus folgendem Beispiel hervorgeht. 3 Vögel
mit dem Gewicht 140, 40 und 10 g legen Eier mit dem Gewicht von 11,2, 3,6 und 1,38.
Die 39 mit D;.. = 63,3 g Gewicht also im Durchschnitt Eier von D;;,, = 5,375 g,
RG also = 8,5%. Die relativen Eigewichte betragen im einzelnen 8, 9 bzw. 13%, mit
dem arithmetischen Mittel 10%. Das entspricht unserer oben erwähnten, ebenfalls mög-
lichen Auswertung. Darc : Das, ist demnach verschieden von dem aussagekräftigeren,
da wahren D;,;,.: Da«., dem Verhältnis der Summe des durchschnittlichen Eigewichts
zur Summe des durchschnittlichen Weibchengewichts. Hrsg.)
Trotz dieser Verschiedenheiten und des Zusammenwerfens nieht verwandter Arten
in den Gruppen zeigen die durehschnittliehen (mittleren) RG der 9 Gruppen die Tendenz,
mit abnehmendem Vogelgewicht ziemlich regelmäßig zu wachsen von 2,1%, auf 12,2%.
(s. letzte Spalte). Das bestätigt erneut die durch HEINROTHS Zusammenstellungen
verwandter Arten gefundene Regel, die auch auf unserer Seite 71 anschaulich gemacht
ist. — Die absoluten Eigewichte wachsen mit den Vogelgewichten, wie zu erwarten.
IX) Vermutete Faktoren für die Schwankung der RG (HEINROTHs, HUXLEYsS und
Anderer Vorstellungen). Bevor kurz auf die biologische Deutung des Relativen Ei-
gewichts eingegangen wird, sei bemerkt, daß HEINROTHS Gebrauch der Bezeichnungen
groß und klein — in zweierlei Sinn — zu Mißverständnissen führen kann, da er einmal,
wie bei uns immer, die Beziehung zwischen absolutem Eigewicht und Vogelgewicht
meint (also kleines RG = relativ kleines Ei, großes RG = relativ großes Ei), dann
aber auch das Verhältnis des RG einer Art zu dem RG der Eier gleichgroßer oder
größerer, nahestehender oder ganz anderer Arten, also das Verhältnis von Verhältnissen
meint, wodurch die Begriffe ‚klein‘ und ‚groß‘ in ihr Gegenteil umschlagen. So
nennt HEINROTH z. B. das im gewöhnlichen Sprachgebrauch relativ große Phalaropus-
Ei mit RG = 17%, „auffallend klein‘ (1922, S. 252), weil es ein kleineres RG besitzt
als ebenso große Eier der Schnepfen und Regenpfeifer mit etwa 20%. Das Ei von
Aptenodytes forsteri mit RG = 1,3% wird als „verhältnismäßig groß‘ bezeichnet,
„da es dem etwa gleichschweren des Kasuars und auch Emus fast entspricht“; (S. 233).
Das wird erst verständlicher, wenn man berücksichtigt, daß Nesthocker im Durch-
schnitt relativ kleinere Eier haben als gleichgroße Nestflüchter, und daß Aptenodytes
forsteri! ein Nesthocker ist, Kasuar und Emu aber Nestflüchter sind. (Dromiceius hat
1,5%, Casuarius 1,8%, als RG).
Temperatureinflüsse auf die Eigröße. Nach RoMAnorF (1949, S.67 und 86) hat
extrem niedrige Temperatur bei Haushuhneiern (Gallus gallus domesticus) wenig
Einfluß auf die Eigröße. Aber diese geht zurück, wenn 21°C mehrere Tage überschritten
werden, bis um 20%, wie sich experimentell ergab. Die größte Variation der Eigröße
zeigt sich in Gebieten mit großen, saisonbedingten Temperaturschwankungen.
Eigröße und Vogelalter. Im ersten Lebensjahr steigerte sich die Eigröße nach derselben
Quelle von 49 auf 61 g, im zweiten von 61 auf 65,5 8.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 75
Eigröße und Reihenfolge im Gelege. Im Gelege ist nicht immer das erste Ei das
größte, auch das letzte nicht immer das kleinste (s. S. 12206).
Eigröße und Ernährung. Auf diese Frage kommen wir im nächsten Abschnitt
(S. 77).
Abgesehen von der dann folgenden Gedankenspielerei über Vogelflügel als Faktor
für die Eigröße, wollen wir jetzt diese Ursachenfrage wörtlich mit HEINRoTH (1922,
S.284) beenden: „Wenn man im allgemeinen sagen kann, daß, wie zu erwarten,
1. Kleinheit des Vogels, 2. Nestflüchtertum, d.h. weit vorgeschrittene Entwicklung
des Neugeborenen, 3. geringe Eizahl im Gelege, 4. lange Brutdauer steigernd auf die
relative Eigröße wirken, so liegt doch durchaus keine zwingende Notwendigkeit für
diese vier Punkte vor. Sie gelten meist nur innerhalb der einzelnen Vogelgruppen
und beim Vergleich der Ordnungen und der Familien untereinander finden wir, daß
auch manchmal das Gegenteil davon zutrifft.“ Dies entspricht ganz HEINROTHS Grund-
haltung im allgemeinen, die lautete: Es geht so, es geht aber auch anders.
X) Beziehung zwischen Relativen Eigrößen (RG) und Verhältnissen am Vogelflügel?
Wenngleich es als paradox erscheinen wird, von einer Beziehung zwischen dem relativen
Eigewicht (RG) und Verhältnissen am Vogelflügel zu sprechen, so möchte ich doch
einen Umstand erwähnen, der eine solche Korrelation andeutet oder vortäuscht.
Als ich dem zuerst von LAFRESNAYE (1845) eingehend begründeten Zusammenhang
zwischen Eigestalt und Skelett nachging, fand ich bei MarsHaArr (1895, S. 71) eine
kleine Liste mit 15 Angaben über das prozentuale Verhältnis zwischen Hand und
Oberarm. Dieses beträgt bei den 11 Arten mit kurzer Hand im Durchschnitt 59,49%,
bei den 4 Arten mit langer Hand 192,5%,. Damals auch mit der Kontrollberechnung
der RG beschäftigt, fiel mir auf, daß die erste Gruppe (kurze Hand) mit einer Ausnahme
(Eisvogel Alcedo atthis ispida) durchweg kleine RG aufweist (1,3— 7,8%), durch-
schnittlich 5,3%, dagegen die der Langhänder hohe RG (8,5— 17,0%), im Mittel 11,6%.
Also relativ kleine Eier bei kurzer Hand, relativ große bei langer Hand. Wegen der
Geringfügigkeit des Materials bleibt es unentschieden, ob hier nur ein Zufall vorliegt
Nicht ohne weiteres erklärliche Korrelationen gibt es aber auch sonst, wie die zwischen
höherem Schalengewicht bei größerer Eiklarmenge beim Haushuhn (Gallus gallus
domesticus) (GROEBBELS 1937, S. 309) oder zwischen höherem Schalengewicht und
dunklerer Eifärbung bei dem Alken Brachyramphus (daselbst S. 309 und 313) oder
zwischen gelber Schnabelfarbe und geringerer Legeleistung beim Haushuhn (daselbst
S. 325). Die oben erwähnten Kurzhänder sind Kuckucke (Cuculidae), Eisvögel (Alcedi-
nidae), Felsentaube (Columba livia), Kernbeißer (Coccothraustes coccothraustes), Bussard
(Buteo buteo), Rohrdommel (Botaurus stellaris), Pelikan (Pelecanus), Goldfasan (C’hryso-
lophus pictus), Schwan (Oygnus olor), Steißfuß (Colymbus, recte Podiceps), Bleßhuhn
(Fulica atra), die Langhänder Ziegenmelker (Caprimulgus europaeus), Küstenseeschwalbe
(Sterna paradisaea), Kolibris (Trochilidae), Mauersegler (Apus apus), also aus ganz
verschiedenen Familien entnommen und bei MARSHALL in ganz anderem Zusammenhang
aufgeführt.
k) Relatives Gelegegewicht. Sehr verschieden sind die Eimengen, welche die Vögel
zur Erhaltung ihrer Art bei jeder Brut erzeugen. HEINRoTH (1922, S. 229) folgend,
geben wir sie in Prozenten des Weibchengewichtes an, als das Produkt aus dem rela-
tiven Eigewicht (RG) und der Anzahl der Eier im Gelege. Im Durchschnitt für 395
Arten verschiedener Größe ergeben sich 38%, des Weibehengewichts. Niedrige Prozent-
zahlen finden wir natürlich bei den Arten, die im Jahr nur ein Ei legen, so das Minimum
bei Aptenodytes forsteri mit 1,3%,, dann z.B. bei Aegypius, Gyps und Gypaetus 3,3
bis 4%, aber bei Hemiprocne mystacea 11,7%, und beim Kiwi (Apteryx), der ja in
jeder Beziehung eine Ausnahme darstellt, sogar 22%, , das Doppelte wenn er gelegentlich
76 Mathematischer Teil
zwei Eier im Gelege hat. Es sind 5%, bei den Pelikanen (Pelecanidae), 7% beim Kasuar
(Casuarius) und den großen Trappen (Otididae), 3 bis 10%, bei den größeren Tauben
(Columbidae), 15%, bei den kleinen, 8 bis 12%, bei den Seetauchern (Gaviidae), Kra-
nichen (Gruidae) und Alken (Alcidae). Für die Gelege mit 10 bis 17 Eiern ergeben
sich 25%, beim Strauß (Struthio), 40%, beim Schneehuhn (Lagopus), 50%, beim Fasan
1 TEE und Rebhuhn (Perdix), "650, beim Steinhuhn (Alectoris graeca), 35%
bei der Schopfwachtel (Colinus virgi BETEN Unsere Wachtel (Coturnix coturnix)
bringt es auf 75°, die Harlekinwachtel (€. delegorguei), wenn sie, wie v. ERLANGER (1904)
fand, einmal 13 Eier legt, sogar auf 130%, womit so ziemlich die (noch normale?)
Höchstgrenze erreicht sein wird. 100 bis 125%, haben Crer und Rallus aquaticus sowie
mehrere Enten (Dendronessa galericulata, Bucephulu clangula, Oxyura leucocephala),
während die meisten ihrer Verwandten mit 25 bis 85%, auskommen. Überraschend
hoch liegt der Satz auch bei so kleinen Arten, wie Meisen (Paridae), Goldhähnchen _
( Regulus) und Laubsänger (Phylloscoopus) es sind, ebenfalls 100 bis 130%. Der Guira-
kuckuck (Guira guira) sowie das Haubensteißhuhn (Eudromia elegans) stehen ihnen
nicht nach. Bei mehreren Bruten im Jahr erhöhen sich die Zahlen entsprechend;
denn hier war immer nur von einem Gelege die Rede.
Diese Beispiele mögen genügen, um wenigstens ein ungefähres Bild von dieser Sach-
lage zu geben, doch sei noch auf das Haushuhn (Gallus gallus domestieus) hingewiesen.
Hier ist die Eigenschaft vieler Vögel, weitere Eier zu legen, wenn ihnen die ersten
genommen werden, durch den Menschen aufs höchste gesteigert. Nach GROSSFELD
(1938, S. 6) legt das Sulmtaler Huhn im Jahre 120—150 Stück von je 70—80g. Die
jährliche Maximalleistung deutscher Rassen sind 170—250 Wyandotte-Eier von je
55—60 g. Nehmen wir nur 150 Stück zu je 58g an gleich 8,7 kg, so bedeutet dies das
fünffache Gewicht (500°%,) des 1,75 kg schweren Huhns, während es die vermutliche
Stammutter, das Bankivahuhn (Gallus gallus bankiva) (550 g), bei nur einer Brut im
Jahre etwa auf die Hälfte ihres Gewichts (50%,) bringt (HEImRoTH 1922, S. 200).
Kleinste relative Gelegegewichte: E
2-G RG _ Rel. Gelegegewichte
Aptenodytes forsteri 32 kg 1,3%. 3m
Goura eristata 2000 g 24%, 24%
Morus bassanus 3500 g 3,0% 3,0%
Gyps fulwus Tkg 3,3% 3,3%
Gypaetus barbatus 6kg 4,0% 40%
Pelecanus onocrotalus 1800 g 20% 40%
Größte relative Gelegegewichte:
Crex crer 130 g 10,6%, 100%
Guira guira 120 g 17,5—25% 100%
Phylloscopus collybita 8,08 14,1% 100%
Parus major 18,0 g 95% 12083
Achitis hypoleucos 485 . 26,0% 104%
Bucephala clangula 650 8 39%, 18%
Aegithalos caudatus europaeus 835g 10,2% 116%
Dendronessa galericulata 500 g 8,2% 120%
Regulus regulus 3,38 13,5% 120%
Porzana porzana 18g 13,6% 125%
(nach HEINROTH, wenig verändert)
Hierbei ist zu berücksichtigen, daß die Vögel der ersten Gruppe nur ein Ei
im Gelege und im Jahr haben (Pelecanus zwei), wogegen in der zweiten Gruppe fünf
Berechnungen für Zwecke der Oologie 77
bis zwölf und mehr Eier das Gelege bilden, überdies einige dieser Arten zweimal im Jahr
brüten.
Relative Gelegegewichte bei Vogelarten gleicher Größe (100g) (nach HEISROTH
1922, S. 279, unter Weglassung zweier Irrtümer, siehe unten, und nach Anpassung
infolge Änderung von RG-Werten):
Q-Gewichte RG Rel. Gelegegewichte
Ptilinopus solomonensis meyeri 928 9,4% 90%
Nymphicus hollandicus 100 g 9,1%, 28%,
Turdus pilaris 100 g 6,5% 34%,
Otus scops 100 g 12,4%, 50%
Haleyon smyrnensis 100 g 11,4% 60%
Capella gallinago 105 g 15,7% 63%
Coturnix coturnix 100 g 8,8% aa
Coturnix delegorguei 808 9,4% 94%,
(Letzte Art hat 5—13 Eier im Gelege, aber nach MACKWORTH-PRAED & GRANT 1952,
S. 267, nur 5— 10.)
HEINROTHS Angabe von 22,5%, für Procellariiformes bezieht sich nur auf das
bloß 43 g wiegende Ei der Oceanodroma leucorrhoa (1922, S. 184). Sterna anaethetus,
bei HEINROTH 34°, hat tatsächlich nur 25,4%, als RG.
Gelegegewicht und Nahrungsverbrauch. GROEBBELS (1937, S.311) erkannte die
Beziehung zwischen dem relativen Gelegegewicht und dem Nahrungsverbrauch. Er
zeigt, wie mit abnehmender Vogelgröße sowohl der tägliche Verbrauch an Trocken-
substanz, als auch die Jahresproduktion an Eiern steigt, beides ausgedrückt in Pro-
zenten des Weibchengewichtes. Der tägliche Verbrauch beträgt in abgerundeten
Zahlen z. B. bei Buteo 5%, Vanellus 8%, Turdus 10%, Parus 20%, Regulus 30%.
Entsprechend erreicht die Jahreseimenge bei denselben Arten und in gleicher Reihen-
folge 20%, 49%, 86%, 158%, 244%, des Weibchengewichtes. Also: Buteo verbraucht
täglich !/,, seines Körpergewichts, Regulus fast !/; des seinen. Buteo erzeugt jährlich
!/, seines Körpergewichtes an Eimenge, Regulus das 2!/,fache des seinen. Bei Vögeln
mit Größen zwischen diesen beiden Extremen ist der Verlauf ungefähr proportional. —
Der Zusammenhang mit der größeren Lebhaftigkeit der kleinen Vögel ist unverkennbar.
Sie bedingt einen stärkeren Stoffwechsel, dieser eine größere Nahrungsmenge, die
ihrerseits wieder die Erhöhung der Eierproduktion ermöglicht. Der träge Waldkauz
(Strix aluco) verbraucht nur 5% Trockensubstanz, leistet aber auch nur 32°, seines
Gewichtes an Eiern im Jahr. Bei der so viel beweglicheren Kohlmeise (Parus major)
sind es die 4—5fachen Beträge.
l) Einfluß von Gefangenschaft und Domestikation auf die Eigrößen. NEHRKORN sagt
in seinem Katalog (1910, S.15 und 95): „Die in der Gefangenschaft gelegten Eier
weichen absolut nicht von denen aus der freien Natur ab, nur diejenigen der domesti-
zierten Vögel können abweichen“. Denselben Standpunkt vertritt SHORE BAILEY
nach seinen Erfahrungen an Gefangenschaftseiern von Turdus pilaris, T. viscivorus,
T. torquatus, Panurus biarmicus, Fringilla montifringilla, Acanthis flavirostris, Plectro-
phenax nivalis, Emberiza schoeniclus und BE. cirlus. Zweifellos trifft eine solche Ansicht
in vielen Fällen zu, offenbar dann, wenn Nahrung und äußere Lebensbedingungen
in der Gefangenschaft wenigstens ungefähr dieselben sind wie in der freien Natur
oder wenn sich die Vögel in ihnen angemessenen Räumen gut eingewöhnt haben.
Anders aber werden sie wohl kaum dazu kommen, immer normale Eier zu legen. Jeden-
falls habe ich so viele degenerierte Schalen von in Gefangenschaft gelegten Eiern
78 X Mathematischer Teil
nicht nur betrachtet, sondern auch gemessen und gewogen, daß ich mit HARTERT
(1921, S. 1955) jener Auffassung nur bedingt zustimmen kann. Als häufigste Ab-
weichung bei Eiern aus Zoologischen Gärten und anderen Vogelhaltungen fand ich
eine geringere Schalenstärke (d), ein weniger auffallendes Merkmal, welches erst durch
unsere Berechnungen leicht zugänglich wurde, während man es sonst fast gänzlich
übersah. Dem Einwand, daß es sich dabei meistens um Einzelstücke handelt, die
zufällig einmal dünnschaliger sein könnten, begegne ich durch den Hinweis auf die
Menge der Fälle, wennschon verschiedener Arten. Ein normales d fand sich haupt-
sächlich bei Anatiden (Gänsen, Enten), Phasianiden (Hühnern) und Columbidae
(Tauben), also bei Arten, die auch in der Gefangenschaft unter fast unbeschränkten
Verhältnissen leben. Andere Degenerationserscheinungen sind ungewöhnliche Größe,
Verfärbung, Glanzverlust, Deformation, rauhe Schale mit Körnchenbildung, Fehlen
der äußeren Kalkzone. Nach BAıLEy ist lediglich die Anzahl der Eier im Gelege zu-
weilen abweichend. Das ist aber keineswegs alles, wie Beispiele aus meinem Material
an Eiern aus Zoologischen Gärten zeigen:
Kasuar (Casuarius) und Emu (Dromiceius): Verfärbung (grau und schwarz statt
grün), Verflachung oder Wegfall der euticularen Körnelung, geringere Größe, dünnere
Schale. Daneben aber auch ganz normale Eischalen, besonders, wenn die Vögel auf
sehr großen Flächen gehegt werden, wie ich es auf der Emufarm des Grafen Seilern
in Groß-Luckau (Tschechoslowakei) gesehen habe.
Tinamidae: Statt grellbunter Eier milchweiße, wie solche normalerweise bei keiner
Art vorkommen.
Branta canadensis: Ungewöhnlich große Eier. Von Branta leucopsis relativ kleine.
Kondor (Vultur gryphus): Geringere Größe, schwache Schale sehr zerbrechlich.
Manche Stücke aber besser, jedoch nie normales Schalengewicht erreichend.
Milvus milvus, Accipiter misus, Aquila, Aegypius: Dünne Schale, degenerierte Fär-
bung, vereinzelt deformierte Gestalt.
Spizaetus coronatus: In der Sammlung Huhn hat er nur die Hälfte des normalen
Schalengewichts.
Ibis ibis: 14 Eischalen aus dem Zoo wiegen im Durchschnitt je 6,1 g, dagegen 6 aus
der Freiheit je 7,4 g.
Gruidae: Bei Grus canadensis und Anthropoides paradisea wogen einige Schalen aus
dem Zoo bis 30% weniger als normale. Ähnlich bei Balearica, bei denen überdies
stellenweise die kalkige Oberhaut fehlt, wodurch Pigmentflecke sichtbar werden.
Cariama cristata: Wie bei Balearica.
Nyctanassa violacea: Dünne Schalen.
Porphyrio poliocephalus vitiensis: Schale dünn, glanzlos, rauh, warzig. (Von MARSHALL
1895, S. 401, irrig so für normal gehalten).
Crax: Dünnschalig und abnorm stark gekörnelt.
Alectura lathami (Megapodiidae): Schale dünn und deformiert.
Crossoptilon auritumn: Aus der Freiheit immer hellbraun, aus der Gefangenschaft
meistens olivgrau.
Tragopan satyra: Fast immer größer und dünnschalig, worauf mich schon HARTERT
(auch zum Teil 1921, S. 1955) aufmerksam machte. Auch in der Färbung schwächer
und heller, oft verschmiert.
Agriocharis ocellata: 5 Schalen wiegen je 7 g, 16 aus Zoo nur 5g.
Lophortyx, Colinus, Excalfactoria: Viele Eischalen sind sehr dünn, zum Teil auch
in der Färbung nicht normal. Beispielsweise Lophortys 0,38 —0,54 g statt 0,66—0,80 g.
Papageieneier (Psittacidae): Bei kleinen Arten meistens normal, bei größeren aber
dünnschalig, wie bei Psittacus erithacus und Lorius roratus pectoralis, manchmal de-
formiert. So bei Ara zugespitzt oder kugeliger, statt oval. Ein von Dr. Rey 1898 bis
1907 gehaltenes Weibchen des Großen Alexandersittichs (Psittacula eupatria) legte
Berechnungen für Zwecke der Oologie ; 7
alljährlich 2—3 Eier, deren Schalen fast stetig (von 1,01 g bis zuletzt 0,63 g) leichter
wurden, bei unveränderter Größe (zum Teil laut Kladde in der Nehrkorn-Sammlung).
Sirix aluco: dünnschalig, teils glatt, teils gleichmäßig auffallend gekörnelt mangels
der äußeren Kalkschicht, dabei glanzlos. Ähnlich bei Glaucidium passerinum aus den
Vogelstuben Girtanners und Zollikofers, durchweg etwa 25%, leichter als normal.
Kleine Arten, wie Carduelis spinus und Pyrrhula pyrrhula, waren in der Schale nur
wenig dünner, in der Färbung aber mangelhaft. — Kanarieneier (Serinus canaria)
sind größer und manchmal kräftiger gezeichnet, oft aber schwach und verwischt.
Eier domestizierter Arten: Soweit unsere Haushühner (Gallus gallus domesticus)
und Enten (Anas platyrhynchos) größer wurden, legen sie bekanntlich größere Eier
als ihre Stammeltern, wie das auch beim Kanarienvogel (Serinus canaria) der Fall ist.
Durch die Domestikation hat sich bei jenen im sonstigen Aussehen kaum etwas ge-
ändert, meistens selbst nichts hinsichtlich der Schalendicke, was auch für die Eier
der Schwäne, Gänse (Anatidae), Tauben (Columbidae) und Jagdiasanen (Phasianus)
gilt. Die erst in neueren Zeiten domestizierten Anatiden, wie C'ygnopsis, Cairina,
Alopochen und Branta canadensis, bringen es oft zu recht großen Eiern. Die vom Pfau
(Pavo eristatus), Perilhuhn (Numida meleagris) und Puter (Meleagris) bleiben normal
groß, haben aber nicht selten eine mangelhaft entwickelte Oberhaut, wodurch dann
die Fleckenzeichnung teilweise oder ganz fehlt. Straußeneier (Struthio) aus Farmen
sind oft größer, nicht selten aber auch kleiner. Ihre dünnere Schale zeigt jedoch weniger
deutlich ausgeprägte Poren und oft eine schwächer entwickelte Oberhaut, so daß
manche Stücke weißlich statt elfenbeingelb sind. Von einer unbestimmten Mischrasse
des Haushuhns wurden mir mehrere prachtvoll sienabraunrote Eier gebracht, auf
nur wenig hellerem Grund ganz dicht dunkel gefleckt, von einer Färbungsintensität
und Schönheit, wie ich sie sonst nirgends sah, auch nicht bei irgend einer wilden Hühner-
art, also erst durch Domestikation entstanden. Mit der Domestikation hängt wohl
auch das relativ häufige Vorkommen von abnorm großen oder kleinen und miß-
gestalteten Eiern bei unseren Haushühnern (Gallus gallus domesticus) zusammen,
gelegentlich auch bei den Gänsen (Anser anser), seltener bei dem übrigen Hausgeflügel.
Rieseneier sind ganz allgemein seltener als ragen Gänseeier mit G bis zu 590 g
wurden bekannt (normal 166 g).
Aus der praktischen Geflügelzucht seien einige der vielen Erfahrungen angefügt,
die CHODZIESNER (1929) mitteilt. Danach haben die schwersten Hühnerrassen nicht
immer die schwersten Eier. Die der leichten Leghorn und Rheinländer sind im Durch-
schnitt schwerer als die der schwereren Kochin und Brahma. Nicht selten wiegen
normale, also nicht doppeltdotterige Eier bis zu 75g, aber auch nur 35g. „Solche
Abweichungen können plötzlich bei Hennen auftreten, die sonst immer normale Eier
legten, dann meist ein anormal großes zu Beginn, ein abnorm kleines am Ende einer
Eierserie. Es gibt auch Hennen, die nur solche über- oder untergewichtigen Eier legen,
und diese Eigenschaft vererbt sich fast immer dominant“.
Bei Hausenten (Anas platyrhynchos) sind die Abweichungen von der Norm in jeder
Beziehung geringer als bei Gallus gallus domesticus. „Das spricht wohl für die Annahme,
daß die Ente durch die Domestikation nicht so grundlegende Veränderungen erfahren
hat und der Wildform noch näher steht‘ (CHODZIESNER 1929, S. 504).
Über die Jahresproduktion an Eiern bei Gallus gallus domesticus s. Bd. I, S. 263.
4. Die Schalendicke (d) der Vogeleier
a) Allgemeines. Es ist ohne weiteres verständlich, daß im allgemeinen größere
Eier dickere Schalen besitzen. Jedoch sind die Unterschiede auch bei gleicher Eigröße
in den verschiedenen Familien recht variabel, wie aus unseren Maßlisten und Zu-
s0 Mathematischer Teil
sammenstellungen ersichtlich ist. Auffällig erscheint, daß manche Arten im Verhältnis
zur Körpergröße ganz ungewöhnlich dicke Schalen besitzen, wie Lophodytes, mehrere
Francolinus, Aegotheles, ehemalige Pyromelana-Gruppe von Euplectes. Andere haben
auffallend dünne, wie Apteryx, Megapodius, Scolopacidae, also unerwartet gerade
solche Arten, die relativ sehr große Eier haben, was einen kausalen Zusammenhang
vermuten läßt, der aber noch nicht aufgeklärt ist.
Zu einer vollständigen Beschreibung der Eischalen, die ja als Körper drei Dimen-
sionen haben, gehört auch deshalb die Angabe der Schalendicke, weil diese Dicke
in keinem konstanten Verhältnis zur Eigröße steht und also Anlaß gibt, sie zu studieren.
Über Schalendicken findet sich nur wenig im Schrifttum. Einige d maß schon Mogumm-
TAaxDon (1861) für 14 Arten, WEnpLAanDT (1913) für 9 Eulen, CLevıscH (1913) für
64 Arten, TIMMERMANN (1930) für eine größere Zahl, aber meist ohne Schalenhaut,
wie schon früher v. NarHusıus (1882, S. 141— 160) in einzelnen Fällen. Sonst fanden
sich nur noch 7 Angaben bei AnprEws (1911) und bei Lowe (1931) für fossile Ei-
scherben, wie ich deren ebenfalls eine große Anzahl messen konnte. Überdies wurden
etwa 1000 Schalendicken mittels eines Schraubenmikrometers direkt ermittelt, jeweils
an mehreren Stellen zerbrochener Eier meiner reichen Scherbensammlung von vielen
Arten, immer aber einschließlich der Schalenhaut,, wie man das für Berechnungen
ohne Zerstörung der Eier braucht. Mittels der dabei gewonnenen Konstanten unserer
Formeln konnte ich dann die d für mehrere tausend Arten berechnen und in unsere
Maßlisten eintragen, soweit die dazu erforderlichen Schalengewichte vorlagen. Auch
Radialschliffe der v. NarHusiusschen, 350 Präparate umfassenden Eischalen-Dünn-
schliffsammlung im Berliner Zoologischen Museum lieferten eine Anzahl Schalendicken
mit Hilfe einer Meßlupe. Solche direkten Messungen erbringen aber immer nur Einzel-
angaben, während für allgemeine Erkenntnisse Durchschnittswerte aus vielen be-
nötigt werden, wie sie nur durch unsere Berechnung leicht und in beliebigem Umfang
zu erzielen sind, ohne Gefahr für die Objekte, ja ohne diese besitzen zu müssen. Es
ist zwar durch den Oologen MoEBERT ein Instrument ersonnen worden, welches durch
das Bohrloch hindurch die direkte Messung der d ermöglicht. Hohe Kosten, die Gefahr
für die Schale und der Umstand, daß diese an verschiedenen Stellen verschieden stark
ist und deshalb nicht nur gegenüber dem Bohrloch gemessen werden muß, verbieten
die Anwendung. Wir brauchen ja vor allem die durehschnittliche Schalendicke, die
wir unter din den Listen verstehen.
b) Berechnung. Wie geht nun die Berechnung der d vor sich? Aus der Formel 33
für g auf Seite 42 folgt
d=£:[(B=d)-K-e- 7] (41)
Der Klammerausdruck bezieht sich auf die „‚mittlere‘“ Oberfläche als dem Mittel aus
äuberer und innerer Oberfläche der Schale, eine letzte Strenge, die nur für sehr kräftige
Schalen und bei höchstem Genauigkeitsanspruch nötig erscheint. Wir lassen deshalb
weiterhin das d in der Klammer weg. Für den praktischen Gebrauch formt sich diese
Formel wie folgt um. Mittels der aus Formel 3 abgeleiteten Gleichung
A
Beer 4
—B (42)
ne ER
5 —=M-7p (43)
— Schalendicke einschließlich Schalenhaut. Hatten wir im Anfang den in Klammern
stehenden, meistens zwischen 0,16 und 0,19 liegenden Faktor m aus direkten d-
hm
Berechnungen für Zwecke der Oologie 81
Messungen empirisch abgeleitet
k
FR K-c-y
und damit die Mehrzahl der d-Werte in den Listen ermittelt, so konnte später nach-
stehend eine analytisch entwickelte Tafel (Tabelle 8) für alle m gegeben werden
(Tabelle 8, S. 82), ausgehend von k, ce und y als den Argumenten. Danach ist die
Berechnung der Schalendicken, die den Bemühungen Dr. Reys nicht gelang, eine
einfache Sache geworden. Trotzdem mußte, um die Tausende von d bewältigen zu
können, die Rechnung für unsere Listen etwas schematisiert werden, um in jeder
Familie mit nur wenigen m auszukommen, soweit nicht besondere Umstände hin-
sichtlich Gestalt und spez. Gew. das verboten. Meistens erwies sich die den durch-
schnittlichen Verhältnissen von k, ce und y entsprechende
m (44)
‚175
Näherungsformel d = mE (45)
A-B
: 14
für Straußeneier (Struthio): d = vi: (46)
AB
\
als für gewöhnliche Zwecke ausreichend genau. Deshalb hätte es auch keinen Sinn
gehabt, in den Zahlen der Listen mehr Stellen anzugeben, als geschehen. — Wird
zu wissen gewünscht, mit welchem Faktor (m) eine Schalendicke berechnet ist, so
ergibt sich aus den Listen:
ee (a7)
5
. Wer die Variationsbreite der d je Art braucht, kann sie aus den extremen Maßen
und Schalengewichten mittels dieser Formeln ableiten. Innerhalb der gesamten Vogel-
welt schwankt d von 0,04 mm bis 2,5 mm, nur bei den ausgestorbenen Dinornis, Psam-
morntis und Aepyornis noch weiter bis 3,5 und 4,7 mm, ausnahmsweise einmal sogar
bis 5,55 mm (beim Aepyornis-Ei Nr. 23 im Teil A).
Etwas unsicherer gestaltet sich die Berechnung der d bei den kreiselförmigen Eiern,
weil hier die Abweichung vom Ellipsoid ziemlich schwankende Beträge ausmachen
kann. Ich fand bis zu 15% weniger Oberfläche, aber auch nur 5—6%, nämlich dann,
wenn eine sehr flache Wölbung am stumpfen Ende das Manko an der Spitze mehr
oder weniger ausgleicht, im besonderen Falle sogar vollständig! Das ist mit bloßem
Auge schwer zu schätzen, nur durch Abzeichnung und Ellipsenkonstruktion genau
festzustellen, eine Erschwernis, die natürlich auch hinsichtlich des Eigewichtes bzw.
des Volumens auftritt, aber in minderem Ausmaß. Hier ist den Gestaltsfaktoren c
und o eine besondere Aufmerksamkeit zu widmen. (Über das spez. Gew. y siehe Seite
116—119, über ce und o Seite 24—27 und 109— 110.)
c) Variation der Schalendicke am selben Ei. Eine genaue Untersuchung lehrt, daß
die Schalendicke eines Eies nicht überall dieselbe ist. In 110 Fällen konnte ich die d
an allen Stellen derselben Schale mehrmals direkt feststellen. Ergebnis: größte Dicke
am spitzen Ende in 45 Fällen, in der Gürtelzone (Mitte) in 35 Fällen, am stumpfen
Ende in 12 Fällen. Achtmal war Spitze und Mitte gleichdick, dicker als das stumpfe
Ende, fünfmal stumpfes Ende und Mitte gleich, dicker als das spitze Ende. Dreimal
war d in Mitte und am stumpfen Ende gleich, dünner als an der Spitze, einmal in
der Mitte dünner und einmal dicker als in den beiden gleichdicken Polgebieten. Dabei
gehen die Unterschiede nicht stets gleichmäßig ineinander über. So fand sich einmal
bei Neophron innerhalb von 7 cm? d = 0,55—0,62 mm. Jedoch variiert der Unterschied
6 Oologie, 42. Lieferung
32 Mathematischer Teil
de AB -m (43) | Tabelle 8. Der Diekenfaktor m zur Berechnung der Eischalen-
F 000k |y = spez. Gew. der Eischale (Kalkschale plus Schalenhaut)
Ba === (44a)
R-Y:C
YES m m m m
177 181 | 187 | 191 | 201 | 186 | 191 | 196 | 206 | 190 | 196 | 200 | 211
1,9 167 172 | 177 | 180 | 190 | 176 | 181 | 185 | 195 | 180 | 185 | 189 | 200
y = 2,0 159 163 | 168 | 171 | 181 | 167 | 172 | 176 | 186 | 170 | 176 | 179 | 190
Ma et 152 155 | 160 | 163 | 172 | 159 | 164 | 168 | 177 | 162 | 168 | 171 | 180
DB 145 148 | 153 | 156 | 164 | 152 | 156 | 160 | 169 | 155 | 160 | 163 | 172
23 138 142 | 146 | 149 | 157 | 145 | 150 | 153 | 161 | 148 | 153 | 156 | 165
(Kugel)
2151500 1,10 1,20 1,30
2211.1:.00 1,00 | 0,97 | 0,95 | 0,90 | 1,00 | 0,97 | 0,95 | 0,90 | 1,00 | 0,97 | 0,95 | 0,90
ce = 1 bei Kugel und Ellipsoid.
ce = 0,97 bei gewöhnlichem, mäßig verjüngtem Oval.
c — 0,95 bei stärker verjüngtem Oval.
ce — 0,90 beim Kreisel und bei sehr gestreckter Gestalt.
Spezifische Gewichte y siehe S. 118. Betr. K und e siehe S. 109— 110, nötig nur, wenn m nach der
Formel berechnet wird ohne Benutzung vorstehender Tafel.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 83
dicke d aus k = a ce = Gestaltsfaktor für die Oberfläche und Gültig für die Eiachsen A
B und B in Millimetern,
Schalengewichtt g in
Gramm
m m m m
193 | 200 | 203 | 214 | 200 | 202 ] 206 | 217 | 199 | 205 | 209 | 220 | 203 | 207 212 | 223
1,40 1,50 1,60 1,70
1,00 | 0,97 | 0,95 | 0,90 | 1,00 | 0,97 | 0,95 | 0,90 | 1,00 | 0,97 | 0,95 | 0,90 | 1,00 | 0,97 | 0,95 | 0,90
Beispiele:
1. Ein Numenius-Ei habe 67,5 x 46,6 =4,73g, ce = 0,95, Y= 2,0. — Das ergibt k = GEB
— 1,45. Laut Tafel wird m — 183 für k — 1,40, aber 185 für k — 1,50, also m — 184. 46,6
Also d = un — 0,277 mm gemäß Eigröße, Eigestalt und spez. Gew.
7
i NEE : 156,5
2. Ein Struthio-Ei habe 156,5 x 136,0 — 290,5 g, ce = 0,985, y = 2,30. Das ergibt k = ,
— 1,15. Interpolation bringst m = 145,7 (= Mittel aus 144 und 147,5). Also d= lm Le]
—= 1,99 mm. 156,5 x 136,0
Für durchschnittliche Verhältnisse ist y = 2,0, ce = 0,97, k = 1,38, K = 3,99, also m = 0,178
0,178 8
oderd = NEN Für mittlere Kreisel mity = 2,0, c = 0,%, k = 1,38, K = 3,99 folgt m = 0,192,
also d = Nez
AB
6*
- “:
“
sowohl am selben Ei, wie auch innerhalb der Art meist nur innerhalb einiger hundertstel
Millimeter. Bei kleinen Arten ist er noch geringer, oft kaum erkennbar. Deshalb fehlen
Passeriformes und andere kleine Spezies fast ganz in den nachfolgenden Zusammen-
stellungen, die aus meinen direkten Messungen hervorgingen.
Ich gebe die Unterschiede der Schalendicke am selben Ei ausführlich an, weil v. Na-
THUSIUS (1882, S. 140) und TIMMERMANN (1930, S. 46) sie bestreiten, obwohl sie schon
ALBERTUS Macnts (im 13. Jahrhundert) und MoguIs-TANDoN (1861) bekannt waren.
Beispiele zur Variation der Schalendieke am selben Ei (110 Fälle)
Zeichenerklärung
Die Zahlen bedeuten d in mm
ohne Zeichen: Schale am spitzen Ende am + am spitzen und stumpfen Ende gleich,
dicksten (45 Fälle) Eimitte am dicksten (1 Fall)
x in der Eimitte am dicksten (35 Fälle) + spitzes Ende und Mitte gleich, stumpfes
© am stumpfen Ende am dicksten (12 Fälle) Ende am dünnsten (8 Fälle)
— am spitzen und stumpfen Ende gleich, A Mitte und stumpfes Ende gleich, spitzes Ende
Eimitte dünner (1 Fall) am dünnsten (5 Fälle) .
+ Mitte und stumpfes Ende gleich, spitzes Ende
spitzes Ende Mitte stumpfes Ende
Gavia stellata 0,320 x.0,333 0,290
Poliocephalus ruficollis 0,210 0,200 0,205
Poliocephalus ruficollis 0,200 0,215 © 0,220
Poliocephalus ruficollis 40,240 0,240 0,215
Col, Era (recte Podiceps) grisegena 0,340 0,330 0,333
Fr # cristatus 0,360 0,330 0,315
2” 2 nr eristatus 0,350 0,330 0,330
= occipitalis 0,310 0,295 0,275
Aechmophorus major 0,430 0,425 0,360
Podilymbus podiceps 0,260 0,223 0,230
Macronectes giganteus 0,60 —0,65 0,55 —0.70 0 0,60 — 0,68
Pelecanus crispus 0,700 x.0,703 0,60—0,70
Pelecanus conspicillatus 0,60 — 0,68 x 0,63 — 0,67 0,62 — 0,66
Ardea herodias 0,42 x 0,43 — 0,44 0,40 — 0,43
Nyeticorax nycticorax 0,23— 0,24 0,21—0,23 0,20—0,23
Euxenura maguari 0,594 0,55 — 0,59 0,53 —0,58
Plegadis falcinellus 0,25 —0,29 x 0,30 0,28—0,30
Platibis flavipes 0,35 — 0,40 x 0,42 —0,47 0,33— 0,40
Guara alba 0,25—0,27 x 0,29—0,32 0,27 —0,30
Phoenicopterus antiquorum +0,51—0,55 0,48 —0,58 0,44— 0,53
Phoenicopterus ruber 0,65 0,63 —0,64 0,70
Chauna torquata 0,47 0,45—0,47 0,42 —0,43
Cygnus olor 0,82 —0,92 0,70—0.75 0,70—0,76
Cygnus melanocoryphus 0,52—0,55 x 0,53—0,58 0,50— 0,54
Chloephaga picta 0,33—0,35 x 0,40—0,45 0,38 —0,41
Chloephaga picta 40,35 — 0,38 0,40— 0,45 0,40 — 0,45
Anser anser 0,58 — 0,64 x 0,62 —0.65 0,61 —0,64
2 „ domesticus 0,629 0,585 0,555
>> >» 0,55 —0,59 0,52—0.55 0,53—0,55
0,530 x 0,605 0,558
am dicksten (3 Fälle)
zusammen 110 Fälle
1. Br
34 Mathematischer Teil fi ir >
„ı%
_
Fortsetzung
Eulabeia indica
Philacte canagica
Dendronessa galericulata
Dendronessa galericulata
Dendronessa galericulata
Casarca ferruginea
Nyroca ferina
Nyroca marila
Oidemia nigra
Anas crecca
„ querquedula
» Fulvigula
„» . discors
-. discors
„ eyanoptera
„ Cyanoptera
Biziura lobata
Gyps fulvus
97 >>
Aegypius monachus
Circus cyaneus
Buteo buteo
Buteo rufinus
Milvus migrans
Falco jugger
Falco tinnunculus
Pedioecetes phasianellus
Tetrastes bonasia
Colinus virginianus
Alectoris barbara
Perdix perdix
Gallus gallus domestieus
Gallus gallus domestieus
Gallus gallus domesticus
Phasianus colchicus
Phasianus colchicus
Chrysolophus pietus
Chrysolophus amherstiae
Grus antigone
Grus rubicunda
Rallus elegans
Rallus elegans
Rallus limicola
Gallinula chloropus galeata
Gallinula chloropus galeata
Fulica atra:
Haematopus ostralegus palliatus
Chettusia gregaria
spitzes Ende
0,55 — 0,59
0,50 — 0,52
0,276
0,327
0,32 —0,35
0,37—0,42
+0,33 —0,38
0,320
0,28—0,32
4 0,15—0,16
0,203
0,330
0,257
0,205
0,280
0,230
0,74—0,78
0,58 —0,60
0,600
0,640
0,69—0,73
0,265
0,400
0,415
A 0,26—0,29
0,29— 0,31
0,240
0,290
0,210
0,205
0,300
0,285
40,395
0,370
0,363
0,300
0,300
0,237
0,270
0,60 —0,67
+0,60 — 0,65
0,27
A 0,22
+0,15
0,26
0,29
+0,28
0,280
0,285
Berechnungen für Zwecke der Oologie
Mitte
0,52—0,55
0,43—0,51
0,284
x.0,352
0,31—0,35
0,33 — 0,40
0,35 —0,36
0,303
0,26—0,32
0,16—0,20
x 0,227
x 0,350
x 0,260
x 0,220
x 0,287
x 0,268
0,67 —0,68
0,55 —0,63
x 0,603
0,617
x. 0,72—0,76
x 0,270
0,385
x 0,435
0,30— 0,32
x 0,33—0,36
0,240
x 0,298
0,190
0,190
0,290
0,270
0,400
0,360
0,350
0,260
x 0,315
0,233
0,267
0,50—0,57
0,55 —0,70
0,26
0,23
0,15
0,27
85
stumpfes Ende
0,53 — 0,55
0,45 — 0,50
© 0,294
0,326
0,333
0,37 —0,40
0,33 —0,35
0,285
0,25—0,28
0,16—0,20
0,203
0,320
0,235
0,210
0,260
0,235
0,68
© 0,72—0,75
0,553
0,635
0,68—0,74
0,265
0,365
0,405
0,30—0,32
0,29—0,31
© 0,270
0,280
0,180
0,185
0,280
0,260
0,400
0,340
© 0,372
0,250
0,295
© 0,240
0,260
0,57 —0,63
0,55 —0.62
0,26
0,23
0,14
© 0,28
0,26
0,26
0,275
0,235
36 Mathematischer Teil
Fortsetzung
spitzes Ende Mitte stumpfes Ende
Vanellus vanellus +0,19— 0,21 0,18—0,20 0,18—0,20
Vanellus vanellus 0,232 0,198 .>. 0395
Belonopterus chilensis cayennensis 0,235 0,220 0,215
Belonopterus chilensis cayennensis 0,232 0,222 0,223
Charadrius alexandrinus 0,155 0,155 © 0,165
Bartramia longicauda 0,260 0,232 0,242
Limosa limosa 0,210 0,205 0,208
Actitis macularia 0,138 0,134 0,130
Catoptrophorus semipalmatus 40,230 0,230 0,225
Capella gallinago 0,143 x 0,150 0,140
Lobipes lobatus 0,090 0,097 © 0,105
Burhinus oedienemus 0,265 x 0,290 0,275
Burhinus oedienemus 0,27 x 0,30 — 0,32 0,30 :
Larus argentatus 0,40 — 0,43 0,35 — 0,40 0,35 —0,38
„ argentatus +0,35 0,35 0,31
argentatus 0,400 0,382 0,325
atricilla 0,235 0,215 0,200
hemprichii +4 0,25 — 0,28 0,24— 0,26 0,24— 0,26
„„ melanocephalus 0,280 0,245 0,250
Rissa tridactyla 0,275 x 0,277 0,260
Chlidonias nigra 0,110 x 0,130 0,125
Sterna albifrons antillarum 40,125 0,130 0,125
Thalasseus sandvicensis 0,210 x. 0,220 0,205
Alca torda 0,580 0,514 0,514
Uria lomvia 0,594 x 0,604 0,477
Columba rupestris 0,149 x 0,153 0,152
Aegolius funereus +0,20— 0,21 0,18—0,20 0,18—0,20
Corvus corone 0,150 x 0,170 0,160
Corvus corone — 0,200 0,185 0,200
Pica pica bottanensis 0,145 0,142 0,140
Pica pica bottanensis 0,140 0,125 © 0,145
d) Variation bei normalen Eiern derselben Art und innerhalb der Familie. Die Zahl
A bedeutet in der folgenden Liste mit innerartlichen Schalendickenschwankungen
den beobachteten Prozentsatz der Schwankung um den Mittelwert zwischen Maximum
und Minimum bei derselben Art.
(Max — Min)
(Max + Min)
(z. B. Struthio camelus d = 1,90 + 10,5%, in mm)
d A
Struthio camelus 1,70— 2,10 mm 10,5%
Colymbus (= Podiceps) ceristatus 0,30 — 0,36 9,1%
Colymbus (= Podiceps) occipitalis 0,25—0,32 12,3%
Aechmophorus major 0,36 — 0,44 10,0%
Diomedea exulans 0,52 —0,63 9,6%
Puffinus puffinus yelkouan 0,275 — 0,284 1,6%
Phalacrocoraz albiventer 0,35 —0,42 9,1%
Berechnungen für Zwecke der Oologie 87
Fortsetzung
d A
Ardea herodias 0,32 — 0,44 15,8%
Ardea cinerea 0,26— 0,34 13,3%
Ardea purpurea 0,24—0,30 18419,
Ardeola ralloides 0 16—0,19 8,6%
Oiconia ciconia 0,46—0,56 9,8%
Ciconia nigra 0,43 — 0,54 11,3%
Plegadis faleinellus 0,25 —0,30 3175
Anas platyrhynchos 0,27 —0,36 14,3%
Dendronessa galericulata 0,28—0,35 K19,
Neophron percnopterus 0,46 0,58 11595
Gypaetus barbatus 0,61—0,75 10,3%
Circus pygargus 0,24—0,31 127107,
Circus aeruginosus 0,32 —0,35 4,5%
Aceipiter gentilis 0,38 — 0,42 5,0%
Buteo buteo 0,33 — 0,38 1,0%
Milvus milvus 0,34—0,40 8,1%
Phasianus colchicus 0,25 —0,30 910%
Gallus gallus domesticus 0,30— 0,40 14,3%
Perdix perdix 0,19—0,29 20,8%
Grus antigone 0,50 —0,67 14,5%
Aramus guarauna 0,36 — 0,42 TETIR
Gallinula chloropus 0,24—0,27 5,9%
Orex crex 0,16 — 0,21 135598
Ortygonax rytirhynchos 0,22—0,25 6,4%
Porphyriops melanops 0,16—0,20 121975
Fulica atra 0 26—0,30 Ta Sye,
Ibidorhyncha struthersii 0,19—0,26 1330
Sterna hirundo 0,15—0,18 9,1%
Pinguinus impennis 0,68— 0,90 13,9%
Crotophaga ani 0,19 —0,22 7,3%
Alcedo atthis ispida 0,077 —0,098 12,0%
Sylvia borin 0,078—0,087 N 5,5%
Lanius collurio 0,085 —0,102 3
Corvus corone 0,15—0,20 14,3%
Garrulus glandarius 0,13—0,15 71,2%
In der vorstehenden Liste finden wir unter den 110 Fällen die größten Diekenunterschiede
am selben Ei mit 0,22 und 0,20 und 0,17 mm bei Cygrus olor (0,70—0,92 mm), bei
Gyps fulvus (0,55—0,75 mm) und bei @rus antigone (0,50—0,67 mm). Das sind + 13,6%
bzw. +15,4%, bzw. +14,5%, der bei ihnen beobachteten mittleren Schalenstärke, dem-
nach ziemlich hohe Beträge. Noch erheblicher können sie gelegentlich sein bei manchen
Arten mit starker, z.T. unregelmäßig dicker Kalkeuticula. So bei Phoenicopierus,
Pelecanus und Phalacrocorax. Auch bei kleinen Vogelarten ergibt sich die Ungleich-
mäßigkeit größer, als man erwartet hatte, deutlich erst, wenn der Unterschied in
Prozenten ausgedrückt wird. Zum Beispiel bedeutet die Differenz von nur 0,02 mm
bei Chlidonias nigra (d = 0,11—0,13 mm) immerhin +8,3%, ihrer mittleren Schalen-
dicke.
ss Mathematischer Teil
Innerhalb der Familie stellt sich das Verhältnis zwischen kleinster und größter.
Sehalendieke, verglichen mit der Proportion zwischen kleinstem und größtem Eigewicht,
wie folgt:
AepyomithidaeG= 1:17 d=1:230
Apterygidae 1 RE) 1:1,6
Tinamidae 1: 8,8 1: 2,0
Spheniscidae 1:33 1: 3,2
Procellariidae 1:11,58 123,2
Pelecanidae A) 1:49
Ardeidae 14658 1230
Ciconidae 1:29 1520
Threskiornithidae 15233 1210
Anatidae 1: 14,8 12,4
Megapodiidae REN 1:34,53
Rallidae 1 45.7 12.30
Falconidae 4131,23 1:2,9
Turdidae 17.81: 1:2,2
Trochilidae 1779 1.34
Beispielsweise wiegt danach das größte Rallenei 15,7mal so viel wie das kleinste.
Dabei ist die dieckste Schale nur 3mal so stark wie die dünnste. Bei Apteryx sind die
entsprechenden Zahlen 1,9 und 1,6, beim Kolibri 7,5 und 3,4. Eine Regel ist nicht zu
erkennen.
Unregelmäßigkeiten finden sich auch nicht wenige bei einander nahestehenden
Gattungen. Gegenüber den Cardinalis-Arten haben z.B. die im Durchschnitt um
etwa 10%, größeren Saltator-Arten um 28,6°%, schwerere Eier, aber um 14,3%, dünnere
Schalen und ein um 19,4%, kleineres relatives Schalengewicht. Die G sind 5,4 und 4,2 g,
die d aber 0,096 und 0,112 mm, die Rg 5,4 und 6,7%.
e) Variation von d und anderen oologischen Zahlenwerten im Gelege (absolute
Werte). Besonders bei kleinen ‚Eiern bemerkt das bloße Auge die immer vorhandene
geringe Größenvariation im Gelege oft kaum. Bei zahlenmäßiger Untersuchung durch
Messung und Wägung zeigt sie sich aber deutlich und größer als erwartet. Um auf
einfachstem Wege wenigstens ein ungefähres Bild der vielen Möglichkeiten zu bieten,
griff ich aus meiner Sammlung 67 Gelege mit gewöhnlicher Variation heraus und
ermittelte für jedes der 313 Eier von 67 Arten alle Einzelheiten, nämlich A, B, g, d,
G, Rg und k, die letzte Größe als ein wesentliches Merkmal für die Eigestalt. Dazu
am Fuße jeder Spalte das Verhältnis zwischen größtem und kleinstem Wert der be-
treffenden Kategorie in jedem Gelege, ausgedrückt durch den Quotienten Maximum
durch Minimum. Die Angaben für 15 dieser Gelege wurden in der Tabelle 9 (S. 89)
vollständig abgedruckt.
Aus der Tabelle 9 läßt sich erkennen:
1. Der größten Längsachse (A) ist in der Regel nicht die größte Breitenachse (B)
koordiniert, ein Zeichen, daß, wenn sich der Uterus in der Längsrichtung dehnt, er
in der Querrichtung meistens nicht nachgibt, wie zu erwarten. Siehe Buteo, Fulica
u. d.
2. In 4 von unseren 15 Beispielen hat das größte (schwerste) Ei nicht das größte
Schalengewicht (g), siehe Pluvialis, Athene, Sylvia, Corvus. Das kleinste Ei hat nicht
immer das geringste g, siehe Athene, Delichon, Cinclus, Corvus.
3. Nur bei Buteo, Fulica, Columba, Athene zeigt das schwerste Ei auch die dickste
Schale. Bei unseren übrigen 10 Arten ist das nicht der Fall, wenngleich die Unter-
Berechnungen für Zwecke der Oologie 89
Tabelle 9. Beispiele zur Variation der oologischen Zahlenwerte im Gelege (absolute Werte)
Jede Zahlengruppe betrifft nur ein Gelege. Die eingeklammerten Zahlen geben das Verhältnis an
zwischen Maximum und Minimum der Argumente (A, B, g usw.) in dem betreffenden Gelege. —
A, B und d in Millimetern, g und G in Gramm, Rg in Prozenten = — 10W2:&,k=A:B ist das
. Achsenverhältnis als ein Kriterium für die betreffende Eigestalt.
A B g d G Rg k Nr. in der
mm mm Gramm mm Gramm % — A>B Tabelle 10
Buteo b. buteo 11
54,5 44,7 5 0,378 59,53 8,33 1,22
55,0 45,6 5,64 0,394 62,82 8,98 1,21
55,1 44,6 5,27 0,374 60,13 8,78 1,24
555 44,4 5,44 0,386 60,22 9,03 1525
(1,018) (1,026) (1,070) (1,052) (1,055) (1,027) (1,032)
Tetrao u. urogallus 16
55,5 40,5 3,98 0,302 48,2 8,25 1,37
HD 41,6 4,22 0,310 51,2 8,25 1,34
55,7 42,1 4,34 0,315 52,4 8,30 #32
56,1 42,0 4,35 0,314 52,7 3.25 1,34
57,8 41,9 4,39 0,308 53,9 8,15 1,38
(1,041) (1,040) (1,103) (1,043) (1,118) (1,018) (1,045)
Fulica atra 22
50,0 35,6 3,03 0,290 34,4 8,82 1,40
50,2 36,4 3,29 0,306 36,1 9,14 1,38
50,6 36,4 Se] 0,311 36 6 9,20 139
51,6 36,0 3,29 0,302 36,3 9,07 1,43
52,0 35,0 3,25 0,303 34,7 9,35 1,48
52,2 35,4 Sal] 0,292 35,6 8,92 1,47
(1,044) (1,040) (1,112) (1,072) (1,064) (1,060) (1,073)
Pluvialis a. apricaria 25
49,1 35,9 1.65 0,178 31,15 5,30 11.837]
49,7 34,3 1,46 0,163 28,70 5,10 1,45
49,8 35,9 1,58 0,168 31.55 5,00 1,39
(1,015) (1,046) (1,130) (1,092) (1,099) (1,060) (1,058)
Columba oe. oenas 34
32,6 26,7 1812 0,219 12,53 8,95 1,22
35,0 Dat 1,24 0,222 13,85 8,95 1,29
(1,073) (1,015) (1,107) (1,013) (1,105) (1,000) (1,057)
Athene noctua 36
33,4 29,5 1,05 0,187 15,65 6,71 143
34,1 29,4 1,06 0,185 15,28 6.93 1,16
35,7 29,9 1,08 0,193 17,14 -6.30 1,19
36,0 28,7 1,12 0,190 16,11 6,95 1.25
(1,078) (1,042) (1,066) (1,043) (112270,(2103) (1,106)
Strix a. aluco 37
44,6 38,5 2,38 0,236 35,9 6.65 1.16
45,6 39,3 2,96 0,290 38,6 7,78 1,16
46,2 39,3 2,82 0,272 38,8 7,30 ci
‚#7,0 38,7 2,80 0,270 38,4 7,30 1,21
47,1 38,8 3,00 0,280 38,8 7,73 1,21
(1,056) (1,020) (1,260) (1,229) (1,080) (1,170) (1,043)
90
Fortsetzung Tab. 9
Jynz t. torquilla
17,8 14,3
18,6 14,4
18,6 14,9
18,6 15,0
18,8 15,2
19,0 15,1
(1,067) (1,063)
Gramm
0,170
0,171
0,193
0,181
0,195
0,190
(1,147)
Dendrocopos minor hortorum
17,0 14,0
al 14,6
17,1 14,7
17,2 14,8
17,3 14,5
17,4 14,5
17,6 14,3
(1,035) (1,057)
Delichon u. urbica
19,7 13,4
20,1 13,2
20,1 13,3
20,7 13,4
21,6 13,6
(1,096) (1,032)
Cinclus ce. einclus
24,7 18,4
25,8 18,6
26,2 18,5
26,2 18,5
26,6 18,3
26,6 18,6
(1,077) (1,013)
Sylvia n. nisoria
19,9 16,1
20,0 16,2
20,4 15,2
20,9 16,4
20,9 16,4
21,4 16,5
(1,075) (1,085)
Sitta europaea caesia
20,8 14,9
21,0 15,1
21,1 14,8
21,3 15,2
21,9 15,1
(1,052) (1,027)
0,125
0,135
0,133
0,140
0,133
0,135
0,125
(1,120)
0,100
0,110
0,110
0,110
0,120
(1,200)
0,260
0,260
0,255
0,270
0,245
0,275
(1,122)
0,170
0,170
0,150
0,180
0,190
0,180
(1,265)
0,148
0,152
0,149
0,150
0,152
(1,028)
mm
0,112
0,107
0,116
0,108
0,114
0,110
(1,083)
0,088
0,090
0,088
0,092
0,089
0,089
0,087
(1,058)
0,066
0,072
0,072
0,069
0,071
(1,090)
0,100
0,095
0,092
0,098
0,088
0,098
(1,087)
0,093
0,092
0,085
0,092
0,097
0,089
(1,140)
0,080
0,080
0,080
0,079
0,077
(1,038)
Gramm
1,96
2,07
2,22
2,25
2,34
2,33
(1,194)
bare
1,94
1,97
2,01
1,94
1,95
1,93
(1,135)
1,82
1,80
1,83
1,91
2,06
(1,144)
4,27
4,57
4,55
4,57
4,52
4,69
(1,098)
2,71
2,76
2,48
2,96
2,96
3,06
(1,233)
2,37
2,46
2,38
2,53
2,58
(1,088)
Mathematischer Teil
Rg
%
8,68
8,28
8,70
8,05
8,35
8,15
(1,080)
7,06
6,97
6,75
6,95
6,85
6,92
6,48
(1,089)
5,50
6,10
6,00
5,75
5,83
(1,108)
6,10
5,68
5,60
5,90
5,42
5,86
(1,125)
6,29
6,18
6,05
6,08
6,42
5,82
(1,100)
6,25
6,20
6,27
6,05
5,90
(1,062)
1,26
(1,040)
1,22
1,17
1,16
1,16
1,19
1,20
1,23
(1,050)
1,47
1,52
1,51
1,54
1,59
(1,082)
1,34
1,39
1,41
1,42
1,45
1,43
(1,082)
1,24
1,24
1,34
1,27
1,27
1,30
(1,080)
1,40
1,39
1,43
1,40
1,45
(1,043)
Nr. in der
Tabelle 10
41
43
46
49
53
Berechnungen für Zwecke der Oologie 91
Fortsetzung Tab. 9
N B g d Were; Rg k Nr. in der
mm mm Gramm mm Gramm % — A:B - Tabelle 10
Passer d. domesticus 63
23,2 15,5 0,185 0,090 . 2,88 6,43 1,50
23,4 15. T/ 0,210 0,100 2,98 7,05 1,49
23,5 15,9 0,190 0,089 3,06 6,20 1,48
23,6 15,2 0,161 0,079 2,81 5,73 55
23,8 16,1 0,210 0,096 3,18 6,60 1,48
(1,025) (1,060) (1,303) (1,265) (1,135) (1,230) (1,048)
Corvus c. corone 67
39,4 29,2 731 0,194 17,45 1.35% 1,35
40,4 29,1 1,40 0,202 17,80 7,87 1,39
40,7 29,8 1.35 0,189 18,75 7.20 37
41,0 29,3 1,34 0,190 18,25 7,35 1,40
41,3 29,3 1,29 0,181 18,38 7,03 1,41
(1.048) (1,024) (1,085) (1,117) (1,075) (1,118) (1,045)
schiede fast immer nur gering sind. Gelegentlich springt ein Ei des Geleges aus der
Reihe, wie bei Passer mit d = 0,079 mm, g = 0,161 g.
4. Das relative Schalengewicht (Rg) ist zuweilen bei den größeren Eiern geringer
als bei kleineren, z. B. bei Tetrao, Pluvialis, Sitta, Sylvia.
5. Das Achsenverhältnis (Index) k macht auch sehr kleine Unterschiede der Gestalt
deutlich. In unseren Beispielen schwankt es zwischen +2 und +5%, durchschnittlich
—+2,8% , um den mittleren Wert im Gelege, prozentual stark nur bei den weißen Eiern
von Athene, Delichon, Cinclus, Sylvia.
6. Die Angaben bei Jynxz, Dendrocopos und Delichon machen die Unterschiede
zwischen diesen zuweilen verwechselten Eiern deutlich.
In der Tabelle 10 wurden für alle 67 hier erfaßten Arten (313 Eier) der Raum-
ersparnis halber jeweils nur das in Prozenten des Minimums ausgedrückte Verhältnis
zwischen größtem und kleinstem Wert jeden Merkmals innerhalb des betreffenden
Geleges angegeben, um zu Durchschnittszahlen zu gelangen. Die Schwankung um
den mittleren Wert der selben oologischen Zahlen beträgt ungefähr die Hälfte der
angegebenen Prozentsätze. Am Tabellenende sind die Minima und Maxima der einzelnen
Spalten für je ein Gelege der 67 Arten herausgestellt, auch Beispiele für starke und geringe
Variation innerhalb der sieben Kategorien gegeben. Daß sich dort so viele Fälle für
in B stärkere Variation als in A finden, wo also die B-Variations-Zahl größer als die
A-Zahl ist, liegt nur an der zufälligen Auswahl der untersuchten Gelege. Wie auch sonst,
zeigt sich die das Gegenteil besagende Regel erst in den Duchschnittszahlen, die die
Tabelle 10 am Ende wiedergibt.
Größeres Material ändert diese Ergebnisse nicht wesentlich ab. Danach beträgt
der durchschnittliche Unterschied zwischen größtem und kleinstem Wert im Gelege
bei B 3,65%, des Minimums, bei A aber 5,66%, bei k 6,35%, bei d, G und Rg 10,32%,
bei g 12,90%. Am schwächsten variiert also die Breitenachse, am stärksten das Schalen-
gewicht. Die Variation bei A, B und k hängt ab von der Gestalt und der Elastizität
des Uterus, die bei d von bisher nicht untersuchten Faktoren (in Dauer und Grad
variable Aktivität der Kalkdrüsen, Kalkgehalt der Nahrung?). Es gibt große Eier mit
dünnen Schalen und kleıne mit dicken, und nicht nur innerhalb der Art und im Gelege,
92 Mathematischer Teil
Tabelle 10. Variation oologischer Zahlenwerte in je einem Gelege von 67 Arten (prozentuale
Werte)
Jede Zeile betrifft nur ein Gelege. Die Zahlen sind die Prozentsätze, um die das Maximum der
einzelnen Argumente (A, B, g usw.) größer als das Minimum ist innerhalb dieses einen Geleges,
Maxi a
also gleich 100 Den — 1}. Zum Bespiel bei Tetrao besagt die Zahl 4,1, daß das Maxi-
Minimum Max
mum der Eilänge in diesem Gelege um 4,1%, größer ist, als das Minimum daselbst. M; —1,041.
Min. j
4
Lfd. Art A B g d G Rg k
Nr.
1. Gavia 0 BA 3,4 4,8 6,7 1,5 3
2. Ardea 7.8 4,2 53 7,0 16,0 10,8 4,5
3. Jaobrychus 7.6 505 9,8 8,8 9,0 16,2 10,7
4. (Ciconia 5:2 3,3 15,6 10,5 Ye: 9,6 13
5. Platalea 3.3 2, 9,7 17,8 12,3 16,0 6,8
6. Oygnus 6.2 1,8 6,8 11,0 13,0 10,2 9,7
7. Anas platyrhynchos 6,0 4,5 6,8 6,7 4,6 7,3 8,0
8. Anas crecca 5,8 3.5 752. 52 4,8 6,7 7,8
19. Aceipiter gentilis 8,2 1,8 25.6 15,2 10,5 12 |
10. Accipiter nisus 3,3 5,6 13,3 132 14,1 15.3 3.2
11. Buteo 1.8 2,6 7,0 33 SR DT BP}
12. Aguila 0,5 3,0 2 1.2 6.5 1,0 2,4
13. Circus 6,2 1:5 10,3 7,8 1,8 10,0 7,8
14. Falco peregrinus 6,2 1,2 11.2 5,3 7,0 5.5 6.5
15. Falco tinnunculus 2,8 %2 6.5 92 4,2 TE 3,4
16. Tetrao 4,1 4,0 10,3 4,3 11,8 1,8 4,5
17. Perdix 8,9 3,8 18,3 15,8 11,1 11,1 9,2
18. Phasianus 6,0 0.8 25,6 19,7 6,1 22.0 6,5
19. Grus 5,4 22 6,8 0,4 10,2 3,0 3,2
20. Porzana 5.3 157 14,3 15,0 7.0 12,1 5,8
21. Gallinula 7 4,3 10,5 13,0 10,0 5,1 5,2
22. Fulica 4,4 4,0 112 7.2, 6,4 6,0 7.3
23. Haematopus >, 2,2 5 2 DEN 31 4,8
24. Vanellus 3 3,1 6,8 5,2 5,3 6,8 6,3
25. Pluvialis 1,5 4,6 13,0 9,2 9,9 6,0 5,8
26 Numenius 157: DD 13,2 12,4 51 10,2 21
27. Limosa 1,5 12, 6.1 57 13:3 132 8,2
28. Capella 6.7 9,2 16,0 3.3 19,0 7,8 3,0
29. Larus canus 6,8 0,8 15,8 7,8 8,8 6,4 6,2
30. Larus argentatus 1,9 0,8 14,8 10,0 5.0 10,5 2,8
31. Sterna 539 2,3 7 2,2 6,2 1.4 6,1
32. Thalasseus 0,8 4,8 15,0 13.2 10,9 10,3 4,5
33. Cepphus 0,7 357 11,0 8,2 6,8 4.0 4,3
34. Columba 7.3 1.5 10,7 163 10,5 ) 8,7
35. Tyto 2,8 2,8 25,3 3172 >57 24,1 5,7
36. Athene 7,8 4,2 6,6 4,3 12,2 10,3 10,6
37. Striz 5.6 2,0 26,0 22,9 8,0 17,0 4,3
38. Asio 12,8 5,7 20,0 12,5 20,0 137 11,0
39. Alcedo 9,6 6,0 12,0 12,5 16,8 9,0 10,0
40. Apus 6,2 3,6 8,0 2,8 6,5 6,4 8,7
41. Jynz 6,7 6,3 14,7 8,3 19,4 8,0 4,0
42. Dendrocopos major 5,0 4,5 17,6 21,0 10,8 19,5 5,9
43. _Dendrocopos minor 3.5 Tr 12,0 5,8 13,5 8,9 5,0
44. Galerida 7.6 1,8 Yay/ 5,6 10,3 5,6 7,4
45. Alauda 10,5 5,8 20,0 24,0 18,0 22,8 4,6
Fortsetzung Tabelle 10
Berechnungen für Zwecke der Oologie
A B g d G
9,6 3,2 20,0 9,0 14,4
4,2 3,2 2,8 10,0 10,5
17,0 2,6 14,8 24,3 18,2
Lot 1,3 12,2 8,7 9,8
3,8 2,8 ıkohil 12,8 10,3
9,8 2,4 15,5 7,3 11,2
7,6 7,5 16,6 11,2 12,6
7,5 8,5 26,5 14,0 23,3
3,2 4,2 16,7 15,0 11,0
10,0 7,0 25,0 8,8 24,0
5,2 2,7 2,8 3,8 8,8
5,4 3,9 10,5 7,4 12,5
9,2 2,5 14,3 13,6 6,3
9,3 4,2 12,8 I 18,0
4,7 4,2 16,8 13,5 6,9
11,8 9,5 20,4 4,4 22,6
3,0 1,8 3,8 5,0 4,8
2,5 6,0 30,3 26,5 13,5
2,8 2,5 I 17,2 6,7
3,4 5,0 5,7 6,2 12,0
6,0 3,0 lilgı 14,2 6,3
4,8 2,4 8,5 nalari 7,9
5,66% 3,65% 12,90% 10,35% 10,45%
Extreme Werte innerhalb dieser 67 Gelege
0 0,5% 2,8% 1,30% 2.15
17,0% 9,5% 30,3% 31,2% 24,0%
Die Variation ist zum Beispiel
gering
1. 12. 32. 33.
9. 18. 35. 37. 53. 55. 63
Lfd. Art
Nr.
46. Delichon
47. Anthus
48. Lanius
49. Cinclus
50. Phoenicurus
51. Turdus
52. Acrocephalus
53. Sylvia
54. Phylloscopus
-55. HMuscicapa
56. Sitta
57. (erthia
58. Emberiza
59. Fringilla
60. Chloris (Carduelis)
61. (Carduelis
62. Coccothraustes
63. Passer
64. Sturnus
65. Oriolus
66. Pica
67. (Corvus
Mittel der 67 Fälle:
Minimum ...
Maximum ...
stark
in A bei Nr. 1.8. 48.
RB... ,:'8128: 6
Er g E> ”
5314548263:
BCE 38253259. 61.
Manor. „118.35. 45..48. 63.
k 3. 38. 48. 58. 61.
B variiert weniger als A in den übrigen 46 Fällen. Das ist die Regel (s. S. 91)
14. 15. 18. 29. 30. 49.
2. 12. 23. 47. 56.
12. 19. 31. 33. 40.
13. 23. 35.
1. 12. 31. 33.
12. 26. 30. 47.
B variiert wie A bei Nr. 16. 23. 24. 35. 52. (5 Fälle)
B variiert stärker als A bei Nr. 1. 10. 11. 12. 25. 26. 27. 28. 29. 32. 33. 43. 53. 54. 63. 65. (16 Fälle)
Rg
10,8
12,5
22,2
12,5
13,6
6,3
9,8
10,0
14,0
5,0
6,2
4,5
15,0
11,8
14,8
11,8
6,5
23,0
16,3
9,2
15,2
11,8
10,16%
Die größten Prozentsätze sind Folge einzelner stark abweichender Eier im Gelege.
8,2
1,8
17,8
8,2
3,2
10,1
9,5
8,0
4,7
9,0
4,3
3,1
11,7
5,7
79
» 14,8
2,9
4,8
4,0
4,2
71,2
4,5
6,35%
33
sondern auch am selben Ei finden wir zuweilen Unterschiede der Dicken bis zu 20%,
und mehr. G und Rg sind nur mathematische Konsequenzen aus den anderen Faktoren,
wie ihre Variation es deshalb auch ist. Betrachten wir diese Verhältnisse einmal näher
(vgl. S. 58):
I) Avarüert stärker als B. Erstens physiologisch, weil derin einem elastischen Schlauch
(Uterus) seine Gestalt erlangende weiche Körper (Ei noch ohne Kalkschale) sich leichter
längs als quer verändern kann. Zweitens mathematisch, weil bei gleichbleibendem
94 Mathematischer Teil
Volumen eine geringe Änderung (AB) der Breitenachse eine größere Änderung (AA)
der Längsachse bedingt. Würde etwa infolge veränderter Druckverhältnisse im Uterus
während der Kalkausscheidung bei einem Ei von 50x35 mm (Vol. = 32,1 cm?)
B um 1mm größer, so zieht das eine Verkleinerung von A um 2,8 mm nach sich, da
das Volumen sich nicht ändern kann und
Vol.
A= 0,5236 B2 (aus ss 8). (49)
Bei AB= +5 mm wird AA = — 11,7 mm. EN notwendig ist das natürlich
auch im analogen Fall der Verkürzung der Längsachse, wo einem AA —= —5 mm
einem AB = +1,9 mm entspricht, weil
Vol
B= I (aus Formel 8). (50)
Die Summe der Achsen (A + B) ist konstanter als jede Achse für sich.
II) Das Volumen variiert stärker als jede der Eiachsen, ebenfalls mathematisch
bedingt, weil die Variationen von A und B hier zusammen wirken. Das gilt auch für
das Eigewicht (G), weil sich dessen Größe von der des Volumens nur durch einen kleinen
Faktor (spez. Gew. des Eies) unterscheidet oder weil zur Variation von A und B noch
die von g hinzukommt. Die Größe der Variation ist natürlich abhängig von den Größen
der Variation der Achsen und der Variation der Eigestalt. Ändert sich bei einem ellip-
soidischen Ei von 50x30 mm A um +6%, B um +4%, so wächst das Volumen von
23,55 cm? auf 27,2 cm?, also um 15,5%. Sind es beim selben Ei 10 und 6%, so ändert
sich das Volumen um 5,55 cm?, also um 23,6%,. Hier, wie auch in anderen Fällen,
erkennt man, daß das Volumen sich um einen etwas variablen Prozentsatz ändert,
der ungefähr dreimal so groß ist wie das Mittel aus den Prozentsätzen der Achsen-
änderungen. Im ersten Beispiel wären das 15,0%, im zweiten 24,0%. (Lineare Änderung
lfach, quadratische 2fach, kubische 3fach).
III) Das Schalengewicht variiert stärker als die Eiachsen, weil hier die Variationen
von vier Faktoren (A, B, d und y) zusammenwirken, ebenso die Schalendieke d wegen
der Variationen in A, B, g und y, von denen sie abhängt. Nicht minder variiert das
relative Schalengewicht Rg aus gleichem Grunde.
IV) Das Achsenverhältnis k schwankt nur wie die Längsachse, im Durchschnitt
und ungefähr, versteht sich. Der Unterschied zwischen größtem und kleinstem Wert,
gemessen an letzterem, beträgt bei unseren 67 Gelege-Beispielen (S. 92—93) im Mittel
nur 6,35%. Innerhalb der Familie ist der Unterschied zwischen größtem und kleinstem
k natürlich viel größer, so bei den Greifvögeln (Falconiformes) 25%, bei den Hühner-
vögeln (Galliformes) 23%, bei Enten und Gänsen (Anatidae) 20%, bei den Sperlings-
vögeln (Passeriformes) ebenso, bei den Strandläufern und Schnepfen (Scolopacidae)
19%, bei Rallen (Rallidae) und Möwen (Laridae) 17%, wie sich das aus den Angaben
unsrer systematischen Listen errechnen läßt. — Bei 800 Eiern der verschiedensten
paläarktischen Arten ergab sich als Durchschnitt: k = 1,382. (Das ist eine recht
merkwürdige Zahl, wie auf S. 137 zu ersehen ist).
f) Korrelation zwischen Schalendieke und anderen oologischen Schalenwerten.
Wir vergleichen nun mit der Schalendicke einer Reihe ungefähr gleichschwerer und
einiger anderer Vögel mehrere andere oologische Werte und beachten dabei besonders
die Beziehungen
Schalendicke zu Eigewicht — 1000 d
(51)
Berechnungen für Zwecke der Oologie 95
1000 d
Schalendicke zu Weibchengewicht — 2 (52)
Q
Schalendicke zu B — _ < (53)
und vernachlässigen nur aus Raumgründen das Verhältnis
1
Schalendickezu A = — g 3 (54)
Um größerer Zahlen willen geben wir also für die drei Quotienten (51—53) Promille-
Zahlen an (Tabelle 11, S. 96).
g) Schalendiecke (d) bei Zwerg- und Rieseneiern. Längen- und Breitenmaße für
die meistens aus dotterlosen Zwergeiern (Spareiern) und die manchmal zwei- oder
mehrdotterigen Rieseneier wurden in Menge publiziert. GROEBBELS (1937, S. 382— 385)
gibt für solche Abnormitäten ein paar hundert Literaturstellen an, Maße ebenso
v. DogAY (1911) und Haag (1911).
Aber außer bei Rey (1892, S. 15), DierricH (1929, 1934) und Stimme (1932)
fehlen durchweg die Schalengewichte g, die derartige Angaben doch überhaupt erst
nützlich machen. Erst sie ermöglichen es, die Schalendieke d zu berechnen, aus denen
man weitere Schlüsse ziehen kann, ohne erst die Eier zerbrechen zu müssen. Deshalb
habe ich die d für einige hundert, zum Teil selbst gemessene und gewogene Zwerg-
und Rieseneier von Wildvögeln und Haushühnern (Gallus gallus domesticus) rechnerisch
ermittelt, vor allem, um die Frage zu klären, wie weit die landläufige Meinung richtig
ist, daß gegenüber normalen Eiern die Zwergeier dickere, die Rieseneier dünnere
Schalen besitzen.
Betrachten wir die Sachlage einmal ausführlich. Im allgemeinen haben kleinere
Eier dünnere Schalen als größere Eier. Aber Zwergeier machen unzweifelhaft den
Eindruck besonderer Dickschaligkeit. Eine nähere Untersuchung unterblieb, eben
weil die Besitzer von Gelegen mit Zwergeiern (eine beliebte Sammelspezialität) zwar
maßen, aber nicht wogen und rechneten, obwohl schon KRAUSE und HaaAq Zweifel
äußerten (1911, S. 21 bzw. 76).
Erst DIETRICH trat der Frage näher (1929, S. 132—137). Da er unsere einfachen
Berechnungsmethoden für die d und O noch nicht kannte, half er sich mühevoll durch
die Ermittlung des Schalengewichts für 1 cm? der Oberfläche (was der Größe nach
ja nichts anderes ist, als die mit dem spez. Gew. multiplizierte Schalendicke). Die
Oberfläche entwickelte er aus dem abgezeichneten Eilängsschnitt durch dessen
Zerlegung. Er berechnet dann eine Halbkugel (2R?- x) am stumpfen Ende und eine
(2r?- x) am spitzen Ende nebst einem Mittelstück als Kegelstumpf [s-xz- (R + r)].
Oberfläche O = x - [A{R? + r?) + s(R + r)]| nach DIETRICH (55)
Eine größere Anzahl Spareier behandelt er nur von Gallus gallus domesticus (20 Stück)
und von Larus argentatus (12 Stück). Den Schaleneinheitsgewichten dieser werden
die von nur 2 normalen Hühnereiern und der Durchschnitt von 17 normalen Silber-
möweneiern gegenübergestellt. DIETRICH (1929, S. 136) schlußfolgert dann: „Das
Gewicht der Schaleneinheit schwankt also zwischen sehr weiten Grenzen, d.h. einige
Spareier haben eine verhältnismäßig dünne Schale, andere eine dicke und schwere
Schale. Bei der Silbermöwe erreicht das Gewicht der Schaleneinheit der Spareier einmal
fast das der gesunden, normalen Eier (Nr. 11), beim Haushuhn gehen mehrere sogar
darüber hinaus (Nr. 3 und 9 und Nr. 1 beinahe!). Im ganzen aber ist die Schale der
Spareier dünner und leichter, als die der normalen Eier.‘‘ — Das wäre also das Gegenteil
PR»
96 — Mathematischer Teil 7
Tabelle 11. Vergleichende Übersicht oologischer Werte bei ungefähr gleichschweren
und einigen anderen Vögeln
Vögel von 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10
etwa 600 g
Vogel-| G 8. B d Rg RG |1000d| 1000d [|1000d
Su G Vogel- B
wicht gewicht
Gramm mm | mm a % Promille
Numenius 480 | 50 2,50 | 40,8 | 0,20 | 5,0 [10,4 | 4,00 0,415 4,90
phaeopus
Hydroprogne 500 | 65 4,50 | 44,2 | 0,30 | 6,9 | 13,0 | 4,62 0,600 6,78
caspia
jo | DE | een
Chrysolophus 550 | 26,7 12,45 | 33,5 | 0,26 | 92 4,9 | 9,75 0,472 7,18
pictus
Lagopus lagopus 600 1.5215 17555 7750:82170,21 fe 3,6 9,78 0,350 6,83
Caloenas nico- 600 | 27,8] 1,70 | 33,0 | 0,19 | 6,1 4,6 | 6,85 0,316 5,75
barica
Colymbus 600 | 30,5 | 2,95 | 34,2 | 0,29 | 9,7 5,1 9,53 0,484 8,50
(= Podiceps)
grisegena
Nyroca nyroca 600 | 43 4,00 | 38,2 | 0,34 9,3 1.2 7,90 0,567 8,90
Haematopus 600 | 46,5 | 3,38 | 39,8 | 0,27 23 7.8 5,82 0,450 6,78
ostralegus
Megapodius 600 | 100 8,00 | 47,8 | 0,34 | 8,0 [16,6 | 3,40 0,567 7,10
eremita
Bucephala 625 | 57 6,00 | 42,6 | 0,39 | 10,5 9,1 6,85 0,623 9,15
clangula
Fulica atra 650 | 36,5 | 3,25 | 35,8 | 0,30 8,9 5,6 8,22 0,462 8,40
Nyeticorax . 750 | 34 2,25 | 25,3 1. 0,22 | 76,7 4,6 | 6,50 0,294 6,24
nycticoraz
Vögel von etwa 1500 g
Corvus corax 1300 | 29 9.0371 33.8.1] 0521 gl 22 1.28 0.161 6,22
Strix n,lapponica 1300 | 53 4,50 | 42,5 | 0,35 | 8,5 4,1 6,60 0,269 8,23
Pandion haliaetus 1400 74 1,20 | 46,2 | 0,44 9,8 53 5.95 0,314 9,53
Haushuhn 1450 54.3. | 5:20] 425272035 9,6 3,75 | 6,45 0,241 8,45
(Gallus gallus
domesticus)
AÄrdea cinerea 1500 | 61 4,65 | 43,0 | 0,30 7.6 4,1 4,92 0.200 6,98
Berechnungen für Zwecke der Oologie 97
Fortsetzung Tabelle 11
Vögel von 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | Zi | 8 | ) | 10
etwa 1500 g Tu
Vogel- G g B d Rg RG [/1000d4| 1000d |1000d4
ge- G Vogel- B
wicht gewicht
Gramm mm | mm % %% Promille
Gavia stellata 1500 | 85 6,70 | 45,8 | 0,33 7,9 Sl 3,88 0,220 7,20
Branta bernicla 1500 | 85 6,50 | 46,7 | 0,34 8,0 5,7 4,00 0,226 7,28
Aquila pomarina 1500 | 90 7,35 | 50,7 | 0,40 8,2 6,0 1 4,44 0,266 7,88
Anser erythropus 1500 | 100 7,50 | 49,0 | 0,35 7,8 6,7 3,50 0,234 7,15
Larus marinus 1500 | 117 8,50 | 53,8 | 0,37 7,3 7,3 3,16 0,246 6,88
Alectura lathami 1500 | 190 |12,5 61,5 | 0,36 6,6 | 12,7 1,89 0,206 5,85
Platalea leuco- 1650 | 76 2: 45,5 | 0,41 9,5 4,6 5,40 0,248 9,00
rodia
Struthio camelus 90000 | 1620 | 278,0 | 131, | 1,92 | 17,2 1,50 | 1,185 | 0,0214 | 14,7
Tetrao urogallus 2250| 53,0 | 4,10 41,6 | 0,31 ou 2,36 | 5,85 0,138 7,45
Numida meleagris 1500| 39,4 | 6,45 38,5 | 0,58 | 16,4 | 2,6 | 14,7 0,385 15,0
galeata
Francolinus 500 | 26,5 | 5,10 33,1 | 0,60 | 19,2 Ham 12246 1,200 18,1
bicalcaratus
Vanellus vanellus 200 | 26,0 | 1,55 33,4 | 0,19 6,0 | 13,0 7,30 0,950 5,70
Philomachus 100 | 21,0 | 0,97 30,6 | 0,14 4,6 | 21,0 6,68 1,400 4,57
pugnazx
Lymnoeryptes 62| 14,3 | 0,67 rs | DZ A 23:0 8,40 1,936 4,40
minimus
Regulus regulus 5,5 0,74 | 0,040 | 10,3 | 0,050 | 5,4 | 13,4 | 67,6 9,091 4,85
Phaethornis ruber 16,2 20242 70012 6,5 | 0,034 | 5,0 113,9 |141,6 | 19,3 5,24
Die Unregelmäßiskeiten in den Spalten 8 bis 10 besagen, daß eine stetige Korrelation der Schalen-
dicke weder mit dem Vogelgewicht noch mit dem Eigewicht noch mit der Eibreite besteht, was auch
für die oben weggelassene Eilänge (d : A) gilt. Die Verhältnisse sind noch ganz undurchsichtig.
7 Oologie, 42. Lieferung
98 EINE Teil
der landläufigen Meinung, nach der solche Schalen dicker sein sollen. Stmmise (1932),
der 49 Angaben mit Gewichten von 29 Arten bringt, sagt: „Das Gewicht der Spareier
pflegt bei einzelnen Vogelarten [Haushuhn, schwarzes Wasserhuhn (Fulica atra),
punktiertes Rohrhuhn (Porzana porzana)] im Verhältnis zur Eigröße ein höheres zu
sein. Die Schale ist meist dieker, die Oberfläche rauher und pigmentreicher, Man
findet auch Spareier mit ganz dünner Kalkschale, welche sich nicht mit dem Eibohrer
anbohren lassen, sondern beim Präparieren zerbrechen‘. Demnach zwei sich wider-
sprechende Ansichten bei den zwei einzigen Autoren, die sich m. W. mit der Sache
befaßten. Die Wahrheit liegt in der Mitte. Ich habe alle diese Angaben durch Be-
rechnung der d nachgeprüft, auch, wie schon gesagt, viel weiteres Material untersucht
und fand, daß die Schalendicken der Zwergeier in denselben, gleiehweiten Grenzen
variieren wie die der normalen Eier derselben Art, also insoweit die gleiche durch-
schnittliche Schalenstärke besitzen, absolut genommen. Nicht berücksichtigt habe
ich dabei von DIETRICHS Material Gallus Nr. 10 und 11, als ganz abnorm dünnschalizg
(0,21 mm), und Nr. 12 als pathologisch dickschalig (0,72 mm) oder falsch gewogen
(3,30 statt 1,50 g), aber einbezogen die von DIETRICH anscheinend nicht berechneten
Nummern 4 bis 7 und 19 und 20. Sie widersprechen meiner Behauptung nicht. Von
Larus argentatus ließ ich weg Nr. 1, 9 und 10 (0,15—0,17 mm) als krankhaft dünn,
Nr. 12 wegen unvollständiger Entleerung, berücksichtigte aber die Nummern 5, 6
und 8, die für meine Behauptung sprechen, von DIETRICH aber anscheinend nicht
berechnet wurden. Verfährt man so, dann verschwindet nach Ausscheidung der krank-
haften Bildungen der Unterschied der durchschnittlichen Schalendicke gegenüber
normalen Eiern fast vollständig. Durch die gelegentlich allerdings großen Unterschiede
im einzelnen darf man sich nicht beirren lassen, denn solche bestehen bei den normalen
Eiern ganz ebenso, nur die Durchschnittswerte ergeben Klarheit. Durch Zusammen-
fassung des Materials von DIETRICH und STIMMInG mit dem in meiner Sammlung
ergibt sich für Gallus gallus domesticus bei normalen Eiern: d,, = 0,344 mm
(0,26—0,40 mm), bei Zwergeiern d, = 0,341 mm (0,24—0,43 mm), Volumina wie
1:4 bis 5. Beachtlich erscheint, daß die Variationsbreite der Schalendicke bei den
Eiern unserer Haushühner fast genau dieselbe ist wie bei den Eiern ihrer vermutlichen
Stammeltern in Indien und Java, die nur halb so viel wiegen. Ei- und auch Vogel-
gewichte hier wie 1:2 (d = 0,26—0,37 mm bei beiden). Für Larus argentatus ist bei
normalen Eiern d,9o = 0,320 mm (0,22—0,40 mm), bei Zwergeiern d,, = 0,307 mm
(0,23—0,36 mm). Volumina wie 1:5 bis 1:8. Deutlicher noch, als der kleine Unter-
schied von 0,013 mm in d spricht hier die gleiche Variationsbreite für unsere Behaup-
tung. Bei so kleinen Eiern wird man nach Analogie mit anderen kleinen Eiern eine
bedeutend geringere Wandstärke der Schalen erwarten, die sich aber eben nicht zeigt.
Bei dem sonstigen mir vorliegenden Material halten sich die Abweichungen von der
absoluten normalen Schalenstärke nach oben und unten so ziemlich die Wage, jedenfalls
ist die Tendenz zur Beibehaltung des normalen ‚‚d‘“ immer unverkennbar.
Einige Gelege und Einzeleier mögen das Gesagte auch für andere Arten belegen.
(Weitere Zwerg- und Rieseneier siehe Seite 18 u. 52). In der Literatur ist darüber, außer
bei Rey (1892), beinahe nichts zu finden.
Falco tinnunculus: Fünfergelege mit Zwergei (2,5 g). Dieses hat d = 0,231 mm, die
übrigen Eier zeigen 0,230 mm, ganz wie andere normale. Volumen 1:8!
Perdix perdix: Sechsergelege mit wachsender Eigröße. Normal ist d = 0,240 mm bei
Vol. = 13,4 cm?. Die einzelnen Schalendicken mit in Klammer beigefügtem Eivolumen
sind: 0,204 mm (1,7 cm?). 0,313 mm (6,6 cm?). 0,260 mm (8,2 cm?). Nochmals 0,260 mm
(10,3 cm?). 0,243 mm (11,3 cm?) und 0,258 mm (11,8 cm?). Hier ist beim kleinsten Ei
das d unternormal, bei den anderen fünf aber übernormal. d, = 0,256mm, trotz starker
Abnormität fast normale Schalendicke.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 99
Fulica atra: Achtergelege mit wachsender Eigröße. Normal ist d = 0,300 mm mit
Vol. = 35 cm?. Kleinstes Ei 0,338 mm, größtes 0,327 mm. Bei den übrigen fünf 0,340
bis 0,352 mm und einmal 0,403 mm. Volumina 10—23 cm?. Dickste Schale bei Vol.
— 15 cm?, also bedeutende Unregelmäßigkeit mit überwiegenden übernormalen Dicken
(dg = 0,350 mm. Abnormes Gelege.)
Dendrocopos major: Vierergelege mit Zwergei. Dieses mißt 18,5 x 14,6 — 0,14,
e 2250, d 0.088 mm. Die) ‚andern‘ ergeben D, — 25,8 x 18,7. — 0,33 g mit
G=4,95g und d = 0,117 mm. Eigewichte wie 1: 2,2. Unterschied in d erheblich.
Die folgenden Angaben betreffen Einzeleier:
Somateria‘ mollissima: Drei isländische Zwergeier mit 3,82 und 3,30 sowie 2,60 g
Schalengewicht haben d = 0,395, 0,340 bzw. 0,382 mm. Durchschnitt 0,371 mm, bei
normalgroßen Eiern mit 8,90 g Schalengewicht ist d = 0,370 mm.
Vanellus vanellus: 12 Zwergeier zeigten im Durchschnitt d —= 0,202 mm (normal
0,200 mm). Volumina 1:5,5.
Larus ridibundus: 9 Zwergeier hatten d = 0,204 mm (normal 0,210 mm). Volumina
1:5,3.
Sterna hirundo: 6 Zwergeier ergaben d = 0,172 mm (normal 0,170 mm). Volumina
1:4. Einmal d = 0,195 mm, Volumen 1:2.
Sowohl bei dem größten der mir bekannten Zwergeier (Struthio camelus australis,
Museum Berlin Nr. 10115) mit 112x93mm = 141g und d= 1,94mm (normal
1,98 mm) als auch bei meinem kleinsten Zwergei Amandava subflava mit 10,5 x 7,0 mm
— 0,025 gund d = 0,058 mm ist die Schalendicke genau die gleiche wie bei durchschnitt-
lichen normalen Eiern, trotz des Volumenverhältnisses von 1:2,50 bzw. 2,86, nämlich
508 : 1265 cm?, bzw. 0,270 : 0,773 cm?.
Im ganzen hatten wir zunächst nur 58 Arten untersucht, aber, abgesehen von den
soeben erwähnten, lagen immer nur vereinzelte Eier abnormer Größe vor, meist nur eins,
die hier alle aufzuführen zwecklos wäre. Es genüge die Angabe, daß von 58 Arten bei 11
die Spareier eine normal dicke Schale aufwiesen, bei 23 eine etwas dünnere und bei 24
eine etwas dickere. Durchschnitt wiederum normales d.
Für Rieseneier derselben Art war mein Material damals dürftiger:
Fünf Rieseneier von Anser anser domesticus hatten d = 0,630 mm (normal 0,648 mm),
Volumen 1,80: 1.
Sechs Vanellus vanellus d = 0,191 mm (normal 0,200 mm), Volumen 1,73 :1.
Bei Larus ridibundus zeigten 5 solche Eier ein durchschnittliches d = 0,208 mm
(normal 0,210 mm), Volumen 1,85 :1.
Bei Turdus merula 4 Rieseneier mit dem normalen d = 0,119 mm, Volumen hier
mus 29,:- 1. |
Fünf sehr große Phylloscopus collybita haben d = 0,060 mm (normal 0,059 mm,
vier sehr kleine Eier 0,055 mm), Volumina wie 1,43 :1,28:1.
Sonst nur Einzelangaben, die aber ebenfalls die Tendenz zur Einhaltung der normalen
Schalendicke auch bei abnormen Eigrößen erkennen lassen. Unter 31 Arten fand ich
Smal normaldicke Schalen, 9mal dünnere, 14mal dickere, nicht relativ, sondern absolut.
Durchschnitt: nahezu normale, nur wenig dickere Schale.
Schließlich habe ich doch noch mein gesamtes aus dem Schrifttum entnommenes
Material an einzelnen Eiern abnormer Größe durchgerechnet, 444 Eier in 152 Arten,
336 Zwergeier und 108 Riesen. Wenn wir unter dem ‚‚normalen d‘‘ das durchschnittliche
d durchschnittlich großer Eier verstehen, so zeigten
36 Zwergeier ein normales d, 136 ein größeres, 164 ein kleineres d.
12 Rieseneier ein normales d, 46 ein größeres, 50 ein kleineres d.
7*
100 , Mathematischer Teil \
Der Durchschnitt bei allen 444 Eiern ergab wieder das normale d, das heißt: Alle
Eisehalen einer Art, ob abnorm groß oder klein, variieren hinsichtlich ihrer Dicke
in denselben absoluten Grenzen wie normale Schalen und sind also in diesem Sinne
100
alle ebenso dick wie diese. Auf das relative Schalengewicht (Re = =) wirkt sich
dieses Ergebnis so aus, daß die Zwergeier mit normalem und größerem d wegen der
geringen Eigröße (G) natürlich ein höheres, als das normale Rg der betreffenden Art
haben. Das gilt aber auch für Zwergeier mit einem kleineren als dem normalen d,
wenn solche Eier entsprechend kleiner sind, so daß trotz der kleineren d wegen der
kleineren Volumina das Rg über dem normalen bleibt. Daher haben etwa 90%, der
Zwergeier ein höheres als das normale Rg. Sinngemäß führt das zu dem Ergebnis,
daß etwa 70° der Rieseneier ein niedrigeres als das normale Rg zeigen.
Hier noch ein Beispiel eines Nachgeleges, wie DIETRICH ein solches vom Sperber
(Aceipiter nisus) erwähnt (1934, S. 185). Aus den dort angegebenen Maßen und Schalen-
gewichten erhält man für das Erstgelege d = 0,245 mm (Vol. = 18,8 cm?); es sind
ganz normale Stücke. Dagegen zeigen die drei Eier des Nachgeleges d = 0,265 mm
und 0,300 mm und 0,182 mm, also stark verschiedene Werte (Volumina 15,0 und
13,7 und 14,8 cm?). Der Durchschnitt der drei Schalendicken ist aber wieder wie der
normale, nämlich 0,249 mm, in Übereinstimmung mit unserer Angabe 0,25 mm
(Bd. I, S. 160). Was an dem einen Ei fehlt, erscheint an den beiden anderen zugelegt,
wie das der Tendenz zur Konstanz der d entspricht. In meinem Material findet sich
ein ähnlicher Fall bei C'hlidonias nigra: normales d — 0,130 mm, drei Zwergeier zeigen
d = 0,121 und 0,141 und 0,125 mm. Mittel: 0,131 mm.
Am deutlichsten wird die von mir behauptete Tendenz, wenn man die durehsehnitt-
lichen Volumina je von Zwerg- und Rieseneiern derselben Art vergleicht, welche alle
die gleiche durchschnittliche Schalendicke haben wie die normalen Eier der betreffenden
Art. Als krasseste Fälle in meinem Material finden sich folgende Volumenverhältnisse
bei gleicher Schalendieke je Art. Die in Klammer beigefügten sind die von Zwergei
zu Normalei.
Volumina
Zwergei: Zwergei:
Riesenei Normalei
Gallus gallus domesticeus (42 Zwergeier, 5 Rieseneier) 1: 8,5 (1: 4,6)
Vanellus vanellus (12 R 6 2 ya N (1: 5,5)
Larus ridibundus (9 65 5 = )1: 9,8 (1.:.5,3)
Anas platyrhynchos (2 5 1 . | | (1:4,1)
Coceothraustes cocco-
thraustes (4 ® 2 24 ) 1: 10,0 (1: 8,0)
Pica pica (7 PR 1 & 171.103) (1: 5,0)
Die Schalendicke des normalen Eies hat also sowohl das kleine Zwergei als auch das
bis zehnmal so große Riesenei, wenn man von der starken Variation im einzelnen
absieht und nur die jeweiligen Durchschnittswerte betrachtet.
GROEBBELS (1937, S. 381 und 382) zitiert meine bereits 1925 gemachten Angaben über
die relativ dünnschaligen Rieseneier und relativ dickschaligen Zwergeier, läßt aber dabei
das Wort ‚relativ‘ weg. Das verführt zu der landläufigen, aber falschen V orstellung,
als ob es sich bei den Rieseneiern um absolut dünnere und bei den Zwergeiern um
absolut dickere Schalen handle gegenüber der Dicke der normalen Schalen. Der Autor
unterliegt ja anscheinend selber diesem Irrtum in seiner allerdings bedingten Vermutung
auf Seite 385, „daß eine normale Menge Kalk enthaltenden Sekretes das eine Mal auf
eine gegen die Norm vergrößerte, das andere Mal auf eine gegen die Norm verkleinerte
* P
Berechnungen für Zwecke der Oologie 101
Eioberfläche niedergeschlagen wird‘. Die ‚normale Menge Kalk“ wird bei Zwerg- und
Rieseneiern nieht aufgetragen. Bei jenen ist es weniger, bei diesen mehr. Aber die
Schalen werden im Durchschnitt bei beiden ebenso dick wie bei normalen Eiern. Der
Kalk wird sozusagen nicht nach Menge und Gewicht, sondern mittels des Millimeter-
maßes zugeteilt, eine schwer erklärbare Tatsache. Dabei bewirkt gerade die Konstanz
der d, daß das relative Schalengewicht Rg bei den Zwergeiern höher, bei den Riesen-
eiern niedriger ist als bei normalen Eiern.
3. Die Reyschen Quotienten q und O
Der Quotient q = entsprang der Bemühung Dr. Reys, das infolge der ver-
schiedenen Eigrößen variable Schalengewicht der Eier des Kuckucks (Cuculus canorus)
und ähnlich aussehender Eier seiner Brutpfleger als ein ergänzendes Kriterium zur
Unterscheidung solcher Eier zu benutzen (1892, S. 10). Hierzu lag Anlaß vor, weil
große Eier der Kuckuckswirte manchmal für Eier des Parasiten gehalten werden
können. Bei gleicher Eigröße würde zur Trennung schon das bekanntlich höhere
Schalengewicht g bei O'uculus canorus genügen, wegen der Ungleichheit mußte die Größe
der Oberfläche (0) in Rechnung gestellt werden, was auch zur Berechnung der Schalen-
dicke (d) geführt haben würde. Die Berechnung gelang aber damals nicht. Um dem
Ziele dennoch näher zu kommen und einen möglichst einfachen Ausdruck für diesen
Zweck zu gewinnen, verfiel Rey auf das Produkt aus den beiden Achsen (A und B),
dividiert durch das Schalengewicht (g), jene in Millimetern, dieses in Millisramm
ausgedrückt. Das derart berechnete q variiert in 90% von 500 Fällen nur zwischen
1,40 und 1,80 (insgesamt von 1,30— 2,00) und ist im Durchschnitt 1,60, deutlich ver-
schieden gegenüber 1,97 bis 2,72 (im Mittel 2,32) bei den Wirten. Wo q um mehr als
25% von 1,60 abweicht, wird es sich nieht um ein Cuculus-Ei handeln.
Zu dem besagten Zweck eignet sich wegen des großen Unterschiedes (1,60 : 2,32)
das q bei Ouculus ausgezeichnet. Es empfiehlt sich sehr wegen der Einfachheit der
Berechnung, besonders, wenn das gewöhnlich so charakteristische Cuculus-Korn
einmal weniger deutlich ausgeprägt ist und deshalb bei der Prüfung im Stich läßt.
Reys Quotient q bringt die Unterschiede zwischen den Eiern des Kuckucks und denen
der Brutpfleger oft noch drastischer zum Ausdruck, als unsere Werte Schalendicke
d und Relatives Schalengewicht Rg es vermögen.
In seinem Buche ‚Altes und Neues aus dem Haushalte des Kuckucks‘“ versuchte
Rey (1892, S. 11) einen noch konstanteren Quotienten dadurch zu erhalten, daß er
statt mit dem Schalengewicht (g) mit dem Eigewicht (G) dividierte, also
A-B ®
A E (57)
Das ergibt im Durchschnitt für C’uculus 0,113 (0,1025—0,1205), für 20 Wirte 0,129
(0,108—0,152). Der Unterschied bei q = Cuculus 1,60 : Wirte 2,32 ist bei @ kleiner
geworden, Cuculus 0,119: Wirte 0,129, also undeutlicher. @ eignet sich demnach zur
- Unterscheidung viel weniger als q. Denn die beiden @ bei C'wculus und seinen Wirten
überschneiden sich sogar in dem Spielraum von 0,108—0,120. Rey hat für die Wirte
keine @ berechnet, daher entging ihm sein Irrtum. Die von ihm angestrebte und er-
reichte geringere Variation ist nutzlos und wird immer erreicht, wenn man eine
größeren (hier 14fachen) Divisor anwendet und — die charakteristischen Dezimalen
wegläßt. Überdies wäre der Vorteil einfacher Rechnung verloren, weil man zum Ver-
gleichen mittels@ erst die Eigewichte haben müßte, auch die der Vergleichsarten.
102 Mathematischer Teil
Tabelle 12. Mittlere Werte von Reys Quotient
Rz = (g in Milligramm, A und B in Millimeter). Je kleiner q. desto dicker die Schale (absolut).
8
q d G Rg
mm Gramm %
Aus verschiedenen Familien
Aepyornis (Maximum) 0,025 3,85 12690 26,4
Aepyornis (Mittelwert) 0,038 3,82 8900 20,2
Aepyornis (Minimum) 0,050 2,94 6460 | 17.3
Struthio anderssoni 0,061 2,50 2440 18,1
Struthio camelus 0,075 1.92 1620 172
Dinornis spec. 0,102 1.60 2156 12,6
Rhea americana albescens 0,148 1,02 685 12,8
Francolinus sephaena grantii 0,21 0,74 19,5 26,5
Cygnus olor 0,21 0,78 331 - 11,8
Aegypius monachus 0,24 0,73 243 10,7
Gavia immer 0,28 0,58 173 10,6
Diomedea exulans 0,29 0,58 455 8,0
Apteryxz australis mantellii 0,34 0,50 434 6,7
Bubo bubo 0,41 0,43 80,0 9,0
Numenius arguata 0.68 0,28 76,0 6,3
Aegotheles cristatus 0.78 0,21 8,0 10,4
Otus scops 0,94 0,19 12,4 7.2
Pieus viridis 1.19 0,15 8,9 6,8
Euplectes orix 1,27 0,13 2,00 10,5
Caprimulgus europaeus 1,29 0,13 8,40 6,4
Molothrus bonariensis occidentalis 1,28 0,13 3,90 8,0
Molothrus aeneus 1,36 0,13 4,15 LO
Philomachus -pugnaz 1,39 0,14 21,00 4,6
Merops apiaster 1,46 0,11 6,50 60
Jynz torquilla 1,57 0,11 2,70 7,4
Cuculus canorus 1,60 0,10 3,22 1,2
Turdus philomelos 1,68 0,11 6,00 5,4
Passer montanus 477, 0,10 2,10 7.3
Passer domestieus 1,82 0,10 2,85 6,7
Sialia sialis 1,84 0,10 3,10 6,1
Lanius collurio 2,00 0,09 3,15 5,9
Emberiza calandra 2.03 0,09 3.91 5,5
Aecrocephalus arundinaceus 2,12 0,08 3,15 5,6
Dendrocopos minor hortorum 2.08 0,08 2,10 6.2
Sylvia nisoria 2,07 0,08 2,63 6.0
Alauda arvensis 2,42 0.08 3.35 5,5
Emberiza citrinella 2,14 0,08 2,14 5.6
Erithacus rubecula 2,18 0,08 2,40 5.6
Anthus trivialis 2.21 0,08 2,44 5,7
Sylvia hortensis 2,23 0,08 2,10 5,9
Fringilla montifringilla 2 0,08 2,14 5.8
Sylvia borin 2,31 0,08 2,23 37
Berechnungen für Zwecke der Oologie
Fortsetzung Tabelle 12
Aus verschiedenen Familien
Motacilla alba
Sylvia communis
Prunella modularis
Anthus pratensis
Carduelis chloris
Phoenicurus phoenicurus
Motacilla flava
Thryothorus modestus
Acrocephalus palustris
Sylvia curruca
Parus caeruleus
Acrocephalus scirpaceus I
Troglodytes troglodytes
Acanthis cannabina
Aegithalos caudatus
Regulus ignicapillus
Selasphorus scintilla
Lophornis ornata
Haushuhn (Gallus gallus domesticus)
Charadriidae
Vanellus vanellus
Pluvialis apricaria
Zoniby& modestus
Charadrius alexandrinus
Oharadrius hiaticula
Charadrius dubius curonicus
Eudromias morinellus
Scolopacidae
Numenius arguata
Limosa limosa
Scolopaz rusticola
Tringa totanus
Capella media
Capella gallinago
Philomachus pugnazx
Actitis hypoleucos
Lymnocryptes minimus
Erolia alpina
Erolia temminckii
0,68
0,89
1,05
1,14
1,26
1,35
1,39
1,55
1,56
1,72
1,97
0,28
0,21
0,18
0,15
0,15
0,14
0,14
0,12
0,12
0,11
0,10
76,0
39,0
26,5
22,3
23,2
16,5
21,0
12,5
14,0
10,2
9,8
103
%
5,8
5,7
6,4
Die Scolopaeidae haben im allgemeinen bei gleicher Eigröße größere q, also dünnere Schalen als
die Charadriidae.
104 Mathematischer Teil
Fortsetzung Tabelle 12
Brutparasitische Kuckucke (Cuculidae)
Clamator glandarius
Clamator coromandus
Eudynamys scolopacea
Scythrops novaehollandiae
Cuculus varius
C'uculus canorus
Cuculus fugax hyperythrus
Tapera naevia
Cuculus fugazx nisicolor
Cuculus poliocephalus rochii
Chalcites basalis
Chaleites lucidus plagosus
Chaleites maculatus
Selbstbrütende Kuckucke (Cuculidae)
Crotophaga major
Centropus ateralbus
Centropus sinensis
Guira guira
Crotophaga ani
Orotophaga suleirostris
Carpococceyz radiceus
Geococcyz californiana
Centropus bengalensis
Rhopodytes tristis
Centropus senegalensis
Coccyzus minor maynardi
Coccyzus americanus
c
Üoccyzus erythrophthalmus
Andere Brutparasiten
Indicator indicator
Vidua macroura
Scaphidura oryzivora
Molothrus aeneus
Molothrus ater
Molothrus b. bonariensis
Molothrus bonariensis minimus
Einige Wirtsvögel dieser Brutparasiten
Lybius torquatus
Fluvicola piea
Elaenia flavogaster
Machetornis rixosus
Pitangus sulphuratus mazximiliani
Passerina caerulea
0,130
0,070
0,165
0,125
0,115
0,135
0,113
0,110
0,064
0,075
0,091
0,100
0,084
Berechnungen für Zwecke der Oologie 105
Fortsetzung Tabelle 12
q d G, Rg
mm Gramm %
Cardinalis cardinalis canicaudus 1,62 0,111 4.22 6,7
Sicalis flaveola 3 0,083 2,36 6,0
Chondestes grammacus 1,78 0.096 2,69 6,5
Spizella breweri 2,30 0,065 1,38 5,9
Zonotrichia capensis De 0,082 2,70 5,8
Arremonops rufivirgatus 2,07 0,087 2,99 3,9
Arremonops chloronotus 1,32 0,095 3.03 6.3
Embernagra platensis 1,82 0,096 4,24 5,8
Diuca diuca 1,68 0,104 3,66 6.6
Paroaria coronata 1,67 0,105 3,57 6,8
Gubernatrix cristata 1,66 0,105 4,13 6,3
Ramphocelus carbo 2,10 0,084 3,30 SZ
Psarocolius wagleri 1,48 0,114 3.64 3,9
Psarocolius decumanus 1,26 0,135 11,20 6,2
Psarocolius atrovirens 1,34 0,128 10,80 6,1
Cacieus cela 1,87 0,092 5,23 5.5
Agelaius phoeniceus 1,90 0,090 3,95 3,8
Pseudoleistes virescens 1,31 0.130 4,70 7,7
Icterus graduacauda audubonii 1,30 0,102 4,08 6.0
Icterus cucullatus sennetti 2.08 0,082 2,65 6,0
Estrilda astrild 2.96 0,057 0,71 6,2
Vollständiger sind die Wirtsvögel in den Eierbeschreibungen der Brutparasiten angegeben im
Teil A. (Bd. I, S. 540—577; Bd. III, S. 391—409, 524—529 u.a.siehe z. B. Cuculidae und Icteridae.)
Aber auch das q empfiehlt sich nur in gewissen Fällen zur Anwendung bei anderen
Arten als bei unserem Kuckuck, da es weder auf die verschiedene Eigestalt, noch
auf das spez. Gew. der Eischalen Rücksicht nimmt, während unser Rg und die Formel
für die Schalendicke (d), um die es hier doch eigentlich geht, allen Anforderungen
genügen. Trotzdem werden in Tabelle 12 (Seite 102) die aus unseren Maßlisten be-
rechneten q für eine Anzahl Arten gegeben. Danach ist für das größte Aepyornis-Ei
q —= 0,025, für das kleinste Kolibriei (Lophornis ornata) q — 5,35. Dem stetigen Wachsen
der q in dieser Zusammenstellung entspricht die stetige Abnahme der zum Vergleichen
beigesetzten Schalendicken (d). Diese Stetigkeit ist eine Folge der nahen Beziehung
zwischen q und d. Ein ganz anderes Bild bieten die gleichfalls beigefügten Eigewichte
(G) und relativen Schalengewichte (Rg), welche die verschiedenen Beziehungen zwischen
den oologischen Zahlenwerten zueinander erkennen lassen.
Der Zusammenhang des Reyschen @uotienten mit der Schalendicke ergibt sich aus
unserer d-Formel auf Seite 80 (s. SCHÖNWETTER 1930)
g K
ae SE
Reys Quotient ist also umgekehrt proportional der Schalendicke.
ey 2 ABK a a
(Formel 43), also STE (<=) Tr: (38)
Natürlich kann im einzelnen Fall der REey-Quotient auch beim Kuckucksei einmal
versagen. In der Hinterlassenschaft eines verstorbenen Naturalienhändlers hatte sich
ein Unberufener zu schaffen gemacht und eine ganze Serie von Gelegen mit „blauen
Kuckuckseiern‘“ fabriziert. Ich erkannte diese sofort als die mir aus jener Handlung
schon in großer Zahl bekannten blaugrünen Eier von Molothrus bonariensis occidentalıs.
Sie weichen nach Aussehen, Gestalt und Korn für den Kenner von (uculus stark ab,
106 Mathematischer Teil
liegen aber mit q = 1,20— 1,45 in dessen Bereich. Mit q allein hätte der Unbefangene
auf Cuculus geschlossen. Hier versagte der Quotient, wie er auch bei Lanius- und
Passer-Arten versagt. Andererseits gelang mir mittels des q der Nachweis richtig
bestimmter Kuckuckseier in spanischen Gelegen von Sylvia h. hortensis, bei denen selbst
der bedeutende Oologe BAKER wegen der allerdings ganz verblüffenden Übereinstim-
mung in der Färbung und Zeichnung lediglich nach dem Augenschein das Vorliegen von
Doppeleiern behauptet hatte, unzweifelhaft irrigerweise, schon weil mehrere solche
Gelege vorlagen und andere Kriterien hinzukamen (vgl. meine Arbeit hierüber, 1932,
S. 83).
Solche anderen Kriterien sind bekanntlich beim Kuckucksei die sich beim Anbohren
zeigende größere Härte der Schale, das meistens charakteristische, unruhige Korn der
Oberfläche und die freilich nicht immer vorhandenen runden, tiefschwarzen Punkte da
und dort zwischen der Fleckenzeichnung. Diese Kennzeichen müssen auch neben der
Quotienten-Prüfung beachtet werden, welche sich auch auf die Wirtseier erstrecken
muß, weil deren q gelegentlich doch einmal unter 2,0 (dem kritischen Wert) liegen
kann, besonders bei Lanius-Arten, Acrocephalus arundinaceus und Sylvia nisoria. In
verzwickten Fällen kann das relative Schalengewicht (Rg) helfen. E
Die vortreffliche Eignung des Reyschen Quotienten q als diagnostisches Merkmal der
Kuckuckseier beruht darauf, daß hier immer nur mit Eiern der Wirtsvögel verglichen
wird, und diese durchweg dünnere Schalen mit geringerem spez. Gew. besitzen. Der
Kontrast ist dann natürlich viel größer und deutlicher als bei Benutzung des q für
andere Arten. So zeigen die oben erwähnten 4 spanischen Kuckuckseier (C’ueulus
canorus bangsi) q = 1,39— 1,55, dagegen im Durchschnitt die Wirtsvögel Sylvia hortensis
2,40 und Sylvia melanocephala 2,55.
Das relative Schalengewicht leistet im Prinzip dasselbe: Cueulus c. canorus hat
Rg = 7,2%, (6,5— 7,3%), die meisten Wirtsvögel zeigen 5,7%, (5,6—5,9%). Rg ist aber
nicht so auffallend und nicht ganz so einfach zu erhalten, was noch mehr für die Schalen-
dicke d gilt, obwohl letzten Endes alle drei Kriterien auf der Schalendicke beruhen.
q arbeitet die Unterschiede stärker heraus.
Aus Maßen bei CHavienY & LE DÜ (1938, S. 94—103) berechnet sich für 37 afri-
kanische (©. ec. bangsi q = 1,68 (1,50— 1,94), für den Brutpfleger Phoenicurus moussieri
q = 2,62, von diesem freilich schon durch das Schalengewicht g allein zu unterscheiden
wie in vielen anderen Fällen auch. Jedenfalls überschreitet g bei den Eiern unseres
Kuckucks (CO. ce. canorus) und seiner Verwandten kaum jemals den Betrag von 2,0.
Unter 800 Kuckuckseiern stellte REy nur einmal 2,02 (Nr. 474) und einmal 2,05 fest
(Nr. 685 seiner Liste, nicht veröffentlicht). Nahezu 2 (1,95— 1,99) kam aber mehrmals
vor. Vielleicht sind unsichere Eier dabei.
Die Kenntnis dieser Tatsache hätte auch die Entscheidung über zwei zweifelhafte
Eier mittels des Rechenschiebers sehr schnell fällen lassen, die von HELLEBREKERS
1951 mühevoll, aber erfolglos versucht wurde. Die Eier maßen 20 x 16,1 = 0,152 g
und 21,7 x 16,3 = 0,150g. Demnach q = 2,12 und 2,36, sind also nicht Cuculus.
Danach und nach Fundort nebst Farbbeschreibung ist das erste Ei ein ungewöhnliches
von Erithacus rubecula melophilus, das zweite eins von Prunella m. modularis, für mich
sicherlich so, auch ohne die Stücke gesehen zu haben, weshalb ich leider nicht das Korn
untersuchen konnte, das ja bei Cueulus auch variiert.
Die Brauchbarkeit des Reyschen Quotienten q bei anderen Arten ist noch gar nicht
untersucht worden. Nach meinen Versuchen sind die Aussichten wenig versprechend, so
wünschenswert ein weiteres Kriterium zur Aufklärung zweifelhafter Fälle wäre. q er-
möglicht zwar z. B. die Unterscheidung der Eier von Molothrus rufoaxillaris und M.
badius durch die Werte 1,18 und 1,34, von Molothrus ater mit 1,47 gegenüber seinen
Opfern mit über 2,0, nicht aber von Molothrus bonariensis und Pseudoleistes guirahuro
Berechnungen für Zwecke der Oologie 107
mit 1,26 und 1,30. Wegen erheblicher Unterschiede in q und Rg lassen sich die Eier
des Parasiten Scaphidura oryzivora von ähnlichen seiner Wirte (Psarocolius u.a.)
trennen. Dort ist q = 1,00 und Rg = 7,7%, hier aber q » 1,40 und Rg — 6,0%, bei
anderen Arten wieder nicht genügend verschieden. Die Eier des Tapera-Kuckucks lassen
sich von denen seiner Brutpfleger mittels q und Rg nur zum Teil unterscheiden. Denn
bei Tapera ist durchschnittlich q = 1,75 (1,70—1,93) und Rg = 6,24%, (6,1—6,8%,),
bei Synallaxıs q = 2,14 (1,93—2,34) und Rg = 5,8%, (3,3—6,2%). Nucifraga mit
q = 1,44 und Corvus monedula mit 1,12 sind mittels q trennbar, aber nicht von den
zuweilen ebenfalls ähnlichen Eiern der Pica mit 1,36. Pseudopodoces, Montifringilla
und Crnelus, die auch sonst nicht sicher trennbar sind, weisen das gleiche q —= 2,00 auf.
Berechnen wir nach den interessanten Mitteilungen BELCHERS (1930, S. 74) die q für die
Eier der Brutparasiten unter den Ploceidae, so zeigen 8 solche im Durchschnitt q = 2,53
(2,16— 2,87), 11 ihrer Wirte 2,72 (2,47— 3,14). Also vielleicht ein weiterer Versager, da
die q zu wenig verschieden sind. Hier muß erst mehr Material bearbeitet werden, als
mir zur Verfügung stand (und heute zur Verfügung steht. Hrsg.)
Reys q geht von der Oberfläche aus, unser Rg aber vom Gewicht. Eine genaue
Prüfung unsicherer Parasiteneier muß beides berücksichtigen. Die von HELLEBREKERS
(1951) untersuchten Eier beweisen auch durch ihr Rg = 5,5% bzw. 4,9%, daß sie keine
Kuckuckseier sind, die ja 6,5—8%, (Mittel 7,1%) haben gegenüber den Wirten mit
5,95—5,9% (Mittel 5,7%). — Daß q = 1,60 + 25% als Kriterium nicht immer aus-
reicht, sahen wir schon oben. Man kann es auch an einem großen Coccothraustes-Ei
meiner Sammlung erkennen. Dieses zeigt 27,2 x 20,0 = 0,33g G =5,72g, q = 1,65
wie Ouculus, aber Rg — 5,75%, was für den Gauch (7,1%) zu niedrig ist. Eier mit q
um 1,60 gibt es mehrere, nur eben bei den Wirten unseres Kuckucks nicht (außer
Galerida, Lanius und Passer). Zweckmäßig wird man also in besonderen Fällen mittels
Rg nachprüfen. Aber die Regel: „Kein Ei von Ouculus canorus hat q über 2,0‘ kann
praktisch als nie versagend gelten.
Nach dem von Rey (1892, S. 10) gebrachten ‚augenfälligen Beispiel“ ist q bei Struthro
(0,76) mehr als fünfmal so groß wie bei Rhea (0,14). Tatsächlich ist es aber nur halb
so groß (0,076). Ein Dezimalstellenfehler entstellte das Ergebnis. Wir stellen in einer
Tabelle (S. 108, Tabelle 13) Rieseneier zusammen, die für Cuceulus-Eier gehalten werden
könnten, aber nach dem q-Wert ‚entlarvt‘‘ werden.
Die Tabelle 13 zeigt:
1. daß die q der Rieseneier, welche für Kuckuckseier gehalten werden können,
nicht wesentlich vom q normaler Eier abweichen und in keinem Falle unter 2,00
herunter gehen, wo dies nicht schon dienormalenq tun. Dagegen liegt das q bei unserem
Kuckuck (Cuculus canorus) meistens erheblich unter 2,00.
2. daß die Reyschen @ praktisch überhaupt nicht geeignet sind zur Unterscheidung
der Eier des Kuckucks von denen seiner Wirte, weil die Unterschiede zu klein sind.
Aq = 2,28—1,60 = 0,68 gegenüber AQ = 0,131—0,113 — 0,018!
3. daß bei Lanius, Galerida und zwei Passerarten die q zur Unterscheidung von
Kuckuckseiern untauglich sind, da sie unter 2,00 oder zu nahe an diesem Wert liegen.
4. daß auch die Rg bei den häufigsten Kuckuckswirten zur Trennung der Eier aus-
reichen, bei anderen aber zu nahe an das Rg von Cuculus heranreichen. Sie können
jedoch bei den Untersuchungen als Probe dienen und manchmal ausschlaggebend
sein, wie im vorstehenden Coccothraustes-Beispiel, in dem q versagte.
5. daß, je kleiner q, desto dicker die Schale gewöhnlich ist. Bei Rg ist das umgekehrt.
108 Mathematischer Teil
Tabelle 13. Reys Quotienten bei besonders großen Eiern, die für Kuckuckseier gehalten werden
können (aus den Sammlungen Rey, STIMMISG u. a.)
AB
- — (56)
g
AB
= — 57
Q G (57)
Art Rieseneier Normale Eier
A|) Be Fe Pen
Ficedula hypoleuca 22,0 | 16,0 | 0,150 | 2,35 | 2,65 | 0,137 5,3%
Troglodytes troglodytes 19,8 | 15,2 | 0,139 | 2,16 | 2,75 | 0,156 5,7%
Luseinia megarhynchos 24,0 | 16,5 | 0,176 | 2,25 | 2,13 | 0,122 5,7%
Phoenicurus phoenicurus 22,7 | 16,8 | 0,162 | 2,35 | 2,43 | 0,136 | 5,6%
Phoenicurus ochruros gibraltariensis 23,0 | 16,8 | 0,165 | 2,34 | 2,47 | 0,129 5,2%
Erithacus rubecula 20.0 | 46,1: 1 0,152 | 2,1271 2518 0:23 5,5%
Prunella modularis 31,7 | 465,3: 1'0,1504 2364] 227024 5,6%
Sazicola torquata rubicola 212 | 14,6 ] 0,115 | 2,707] 2467 04321 5,5%
Oenanthe oenanthe 21,7. 1,160 | 0,156] 2221 2257 034 5,4%
Aecrocephalus arundinaceus 26,0 | 18.0 | 0,200 | 2,34 | 2,12 | 0,119 3,6%
Sylvia nisoria 23.9 1:172 10,190] 216 1 207 7035 6,0%
borin 23,8 | 16,4 ] 0,161.| 2,42 | 231 |] 0,132 5,7%
atricapilla 24,2 | 16,0 | 0,160 | 2,42 | 2,23 | 0,135 6,0%
„ communis 21.0 | 16,0 | 0,120 | 2,80 | 2,39 | 0,141 5,9%
Lanius collurio . 26,5 | 19,3 | 0,250 | 2,04 | 2,00 | 0,118 5,9%
Certhia familiaris macrodactyla 19,7. | 15,2 ] 0,130 | 2,30 } 2,85 ]0,165 6,1%
Alauda arvensis 26,1 18,3 | 0,2177 220°] 2,127 04% 5,9%
Galerida cristata 27,4 | 18,9 | 0,283 | 1,83 | 1,95 | 0,117 6,0%
Passer domesticus 1 25,9 | 16,9 | 0,240 | 1,82 | 1,82 | 0,121 6,7%
Passer montanus 22,6 | 15,4 | 0,175 | 1,99 | 1,85 | 0,132 7,3%
Carduelis carduelis 21,0 | 15,0 | 0,150 | 2,10 | 2,74 | 0,147 5,6%
Emberiza hortulana 25,1 | 16,8 | 0,185 | 2,28 | 2,08 | 0,122 6,0%
Durchschnitt: 2,25 | 2,28 | 0,131
Cuculus canorus q = 1,30— 2,00 1,60 | 0,113 7,2%
(normale Eier)
6. Die Oberfläche (®) des Eies
a) Empirische Ermittlung. Sie gewinnt Oberflächengrößen aus Abzeichnungen
und ist auf Blatt 10 des Manuskriptes für den Allgemeinen Teil dieses Handbuchs
besprochen.
b) Analytische Berechnung. Auch hier gehen wir vom Rotationsellipsoid aus und
formen die in den Lehrbüchern auf die Halbachsen gegründete Oberflächenformel
für unsere Zwecke um, indem wir die ganze Länge der Achsen einführen und A durch
B-k ersetzen. Das ergibt
ws 2 ERE
Ö, — B?#: = ( ee arc sin ei] (59)
2 ye 4 k
— B?K (Formel 15) = Oberfläche des Ellipsoids.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 109
Durch Anbringung des Gestaltsfaktors ‚,‚c‘‘ folgt
®=B?.K.e (Formel 14) für die Ei-Oberfläche.
Da ‚„K“ eine Funktion erster Ordnung von k = A : B (Formel 3) und für k = 1 (Kugel)
gleich x = 3,14159 wird, für k= 2 (abnorm gestreckte Ellipse) nach der Formel
gleich 5,370 wird, also um 2,228 größer, so ist aus Proportion
K — 3,14159 + (k — 1): 2,228 = 0,914 + 2,228k. (60)
Für diesen variablen Wert wird die Tabelle 14 wiedergegeben, aus der für jedes hier
in Betracht kommende k das zugehörige K ersichtlich ist. Dieses multipliziert mit
dem Quadrat der Breitenachse mal dem geschätzten oder auf Seite 110 der Tabelle 15
entnommenen Gestaltsfaktor ce ergibt die gesuchte Ei-Oberfläche. Man braucht diese
z.B. für Verdunstungsfragen, und wir haben ja schon bei der Berücksichtigung von
Schalendefekten sowie bei der Berechnung der Schalendicke und des Schalenvolumens
vorgriffsweise Nutzen von der Formel gezogen. Für die Berechnung der Schalendiecke
aus der Grundformel g= 0 -c-d-y (Formel 33) wird man, für die dicksten Schalen
und wenn es sehr genau darauf ankommt, in der obigen Formel für O das B durch
(B — 2d) ersetzen, weil da die Oberfläche im Niveau der halben Schalendicke in Frage
kommt. d wird, wenn nötig, zunächst durch Näherung bestimmt (s. S. 81) oder
aus den Listen des Systematischen Teils A entnommen. Entsprechend folgt für die
Tabelle 14. Berechnung der Oberfläche des Rotationsellipsoids. O0. = B?’K (Formel 15, Original
SCHÖNWETTER)
k=A:B, A = Längsachse, B — Breitenachse, K = 3,416 (k — 1) - 2,228
{«b}
k K k K k K k K k K ®
©
1.00. ° 3,142 In ae | 20 ne | 1 Are oa
1,01 3,164 1a a | er 08e || ar 2500 | an, A e
1,02 3,186 oa 2l633, 110, Ao7s | eo, A503 182 Mseg =
1,03 3,208 na ae Aa: an en ze =
1,04 3,231 La a le ee le | ee 3
1,05 3,253 1250, 3less) | 1.45 74144 165 7 4,589) || 1,55 5035, =
nu 3 a ERS JE Sasse Pa TE RB IETANENRLSET N. VERNIEBEEeN
1,06 3,275 oo ala mas Aero Korn | tse. 5058 0 01<
1,07 3,298 eier A| ya een: =
1,08 3,321 os Seo es Hola os Zonen 2ss 5.103
09 3.343 Too ss | 119: 10337 KL69n nr Lorsu 180 5 one
10 3,365 300 3810, 1,507 74.255: || 1,0% A700 \\n2900 Same
BEER EDEN N ee | ea En nme Alu ro. a ar
Me 31387 a ea || || ae are || a es
1,12 . 3,409 15320,318557 | 105009 2.3005, [1,7000 42.7855 11.92) 5 100
a 3431 SS als 53 1390 0073 res 193 52a ee
354 1347 30 154 ae 17a 7700 194 503 ==
a 3176 iss 31093, 1,155 4.366. ulzaı . 2,512 195 Hoss
1,16 3.499 1.36 013.945 | 1.56 ©2359 | 1.6 4835 | 1.96 5.281 TS =
ee 350 Mae yo 7 ao za sr. 197. 5,3040 oe
1,18 3,543 as 3lgsomn| 1.58 0 4.454 [nie asszon lo 1osı 15,386 Fr
1,19 3,565 1,3 AD 10159, AA56 | 1,79... 4,901. |,1.99 5.348.008
1,20 3,588 140 4033 | 1.060. 2478 180 , 4,993 7| 2,00 5370 58 3
2)
Um die Oberfläche des Eies (O) zu erhalten, bedarf esnoch der Multiplikation mit dem Gestalts-
faktor.
0 = B®K- e (Formel 14)
110 Mathematischer Teil
Tabelle 15. Gestaltsfaktor e für die Oberflächenbereehnung
A Dr Dr
Es 1,00 | 1,25 | 1,50 | 1,75
1,10 0,999 0,992 0,990 0,988 /
1,15 0,999 0,987 0,979 0,972
1,20 0,998 0,983 0,972 0,962
1,25 0,998 0,980 0,966 0,953
1,30 0,997 0,977 0,960 0,944
1,35 0,997 0,975 0,955 0,936
1,40 0,997 0,973 0,950 0,929
1,45 0,997 0,972 0,946 0,922
1,50 0,996 0,970 0,942 0,916
1,55 0,996 0,968 0,938 0,910
1,60 0,996 0,966 0,934 0,904
1,65 0,996 0,964 0,930 0,898
1.70 0,996 0,962 0,927 0,892
1,75 0,996 0,962 0,924 0,886
1,80 0,996 0,961 0,921 0,880
eist im Durchschnitt 0,95 und schwankt von 0,88 bis 1,02 (vgl. S. 24). Dieser Faktor wird ge-
schätzt oder der Tabelle 15 entnommen. Da die Eigestalt nicht nur vom Achsenverhältns A:B=k
abhängt, sondern auch von dem Verhältnis a : b, also dem der beiden Teile, in welche die Längsachse
durch die Breitenachse B zerlegt wird, muß dieses a: b zuvor durch Messung ermittelt werden. Da
c = 1,029 bis 1.049, lassen sich aus der Tabelle für e auch die g näherungsweise ableiten. Die An-
wendung der scharfen e ergibt Cartesische Ovale.
Beispiele für ellipsoidische Gestalt, wo also e = 1:
91,0
Megapodius freycinet: 91,0 x 54,2 mm gibt k = — 1,679, also K = 4,654. 5,42 x 5,42
x 4,654 — 136,7 em? Oberfläche (Ellipsoid). N
Nach der Methode bei GROSSFELD (s. 6c, 8. 112): 656 - a — 136,1 cm? Oberfläche (Car-
tesisches Oval). 200
Patagona gigas: 19,9 x 12,2 mm gibt k = nn — 1,631, also K = 4,547 und damit O = 6,77 cm? .
(Ellipsoid). es 2
Nach der Methode bei GROSSFELD: 681 - (a — 6,74 cm? (Cartesisches Oval).
Drei weitere Beispiele für andere Eigestalten siehe bei der Methode nach GRossFELD (1938),
unten 8. 112.
Oberfläche der Innenseite der Schale, also für die
Oberfläche der Schalenhaut = 0; = (B — 2d)?- K - e = Oberfläche des Eiinhalts. (61)
O; ermöglicht u. a. auch die genaue Berechnung des Gewichts der verloren gegangenen
Schalenhaut fossiler Eischalen. Beispielsweise für das Aepyornis-Ei Nr. 6 unserer
Liste: B= 21,3 cm, d = 0,56 em, k = 1,31, also K = 3,83, c = 0,98, Dicke der Schalen-
haut d, = 0,04 cm und ihr y = 1,0.
Gewicht der Schalenhaut = O;-d,- 7 = (B — 2d)?-K-c-d,-y (62)
— 20,18 X 20,18 x 3,83 X 0,98 x 0,045 X 1,0 = 68,8 g.
(B-2d\B-2d) K e d, y
c) Berechnung der Ei-Oberfläche nach Edin, Helleday & Andersson (1937, S. 316).
Diese von mir bei GROSSFELD (1938, S. 317) entnommene Methode bedarf nicht des
eh
Berechnungen für Zwecke der Oologie 111
Gestaltsfaktors, da sie vom Cartesischen Oval (nicht vom Ellipsoid) ausgeht und auf
variationsstatistischem Wege die nachstehende Tabelle 16 errechnet für die Ober-
fläche eiförmiger Körper, abhängig vom Achsenverhältnis k= A:B und vom Ver-
hältnis e=a:b (Formel 4), in welchem die Längsachse durch die Breitenachse ge-
sehnitten wird. Die Tabelle 16 (S. 112) gibt die Größe der Oberfläche für Eier mit
der Längsachse A — 200 mm an. Die Reduktion auf andere Längen von A erfolst
/ 2
durch Multiplikation der Tafelwerte mit dem Faktor so) ,‚ was dort durch eine bei-
gegebene Tafel (unsere Tabelle 17, S. 113) für Eigrößen des Haushuhns (Gallus gallus
domesticus) (A = 45—70 mm, a/b = 1,0 und 1,5) erleichtert wird, von uns hier für
a/b = 1,25 und 1,75 und für alle anderen Eilängen erweitert, die dort mit „L‘, bei
uns mit ‚A‘ bezeichnet sind. Beispiele werden im Anschluß an unsere Tabelle 16
(S. 112) angegeben.
d) Ungefährer Näherungswert für die Oberfläche. Wenn er genügt, kann man
Deren .
ae (63)
. oder
RE
0m — 91 (64)
setzen (aus g— 0 -d-y, (Formel 33)). Dabei wird aber ein großer Wert aus kleinen
Argumenten berechnet, was nur ungenaue Resultate ergibt, wenn die Zahlen, wie
hier, auf nur 1—2 Dezimalen gegeben sind, und y als konstant gleich 2 gilt.
7. Der große und der kleine Eiumfang (U und u)
Es ist vorgeschlagen worden, bei den Eibeschreibungen auch die Eiumfänge anzu-
geben. SZIELASKO (1913, S. 88 u.a.) hat das praktisch durchgeführt, dabei aber m. E.
den Wert solcher Angaben für die Beschreibung überschätzt. Sie sind noch weniger
anschaulich als die Dimensionen. Das schließt nicht aus, daß für manche Zwecke die
Kenntnis der Umfänge erwünscht oder notwendig ist. So z. B., wenn man die Eier
nicht in den Händen hat, oder wenn zur Messung sehr großer Eier die für eine direkte
Ermittelung der Achsenlängen erforderlichen großen Werkzeuge nicht zur. Verfügung
stehen. Man mißt dann die Umfänge mittels eines Bandes, um daraus die Dimensionen
zu berechnen, wie wir das in einigen Fällen tun mußten, auch bei der Nachprüfung
einzelner Literaturangaben. Man muß also schon rechnen, wenngleich SzZIELASKO (1920,
S. 71) das nicht tut und für unnötig hält, weil man die Umfänge ja direkt messen könne.
Mit gleicher Logik könnte man dann aber auch seine große Arbeit über die Eigestalt für
unnötig halten, weil man diese ja direkt abzeichnen kann. — TIMMERMANN (1930) gibt
sehr viele U an. Schon FLOERICKE (1918) bringt eine ganze Anzahl Eiumfänge, dabei
aber viele falsche, Fehler bis zu 13%, auf S. 33 z. B. in fünf Fällen von 10 mm Breiten-
achse Umfänge von 34—36 mm für Remiz pendulinus statt immer 31,4 mm = 10r.
Der „kleine Umfang“ ist einfach u= B-r. Er bedarf keiner weiteren Erörterung,
wenn man absieht von dem praktisch vollkommen belanglosen, an Null grenzenden
winzigen Unterschied, der sich bei Serienmessungen ergab, und der auf Grund theore-
tischer Fehlerberechnungen von Biometrikern als wahrscheinlich real (nicht durch
unvermeidliche Messungsfehler verursacht) angesehen wird. Zur direkten Messung
dient ein geschmeidiges schmales Meßband, im Notfall genügt ein Faden oder besser
ein Papierstreifen.
‚ „104 q: 0 syuownday UOABGZIRUOS domyos SOp Bunpygrungg oyaıpunysum swago orp aoqu 72908 ‘(9) SIOPLISILISON) souoy RPOG SPoyyom od1go oLdy
00% "wo ELOT= 906°0 X TOL'P X 20°7 X 20°C = 9 MaEl '906°0 = 9 'TOLF =
Yy :9q0I4 — wo z'L0OT = z\0'78 x 06° =0 SIT =4:% SOLFT SM WO TOT X ggg "yasıuoy Yo9ASoBdur] Smrawmon mau] [ordsiogg 'g
I\ı
"zu 266 = 5960 X HHEEX STEX STE = O9: Mel
002 "76°0 = 2 '998°E = 4 :OPOLIYON UMPur Op yoru ogoaT —
„un g'6E = di x8E8 = 0 09T TS AEWTZET = N WO SZEX GEF "PSIOry aozyıds Arggwur !sısuauuahno sısuopıyo snaspdouoppgg adstagg 'z
S\-At6
("uopaoa YzyRlpsOd yonv uuwy 9) „wo g'gpJ =
LEO XGIEFXIKH = I. ME=O (ET OPqLL Me 0160 = 2) 992 P = U 99107 FI OI[OqRL SUY !USLLEMNOHOS BPOPN Ypru 9g0aT —
008 1)
uo H#8H5I = | —
3 rl 06
gEL = O “(UOss8Ww88) 97T = Q:% ‘09T = fe = 2 0 00'9 X 00°6 "Puoyproangu prosdirpsp woA Stuom 2enıb sn. [ordstogg "I
LS 189 909
Q 669 gLT
LLG 669 1%
79 127 79 999 989. 204 sg LöoL HPL POL 984 or] 668 878 898 628 Gel
ae 189 809 99 L99 OL’ 199 129.169 STı LIT VEL 894 TILL 064 rrI cH8 LIES GLS L88 1E'1
'D 089g L0O9 69 199 691 99 919 L69 STIL 977 rk 094 822 164 ET ITS 998 788 968 081
ea 069 619 PFE9 999 91 699 889 804 Pech Pejeig SPL 994 984 808 er] 098 SLS 068 906 671
vo 06° LTIO 689 199 L9'T 899 689 601 08L rg] g90L HLL 66h 018 Ir1 018 #788 668 PI6 sl
In 009 229 FF9 999 99°] 72.9 969 IL 98% & 69L T8h 662 -LI8 or 0885 968 606 866 La
= 209 LO 679 119 097 089 TOL TEL CPL eu] ILL 684 908 #68 6€°1 165 06 616 886 91
8 079 6)00) -U9]RUOS yo1]9% IONRP oyarıF YY9LM9D
soaryejoy | -uopeyag |SoAryejoy | sorsg sop "non 'zodg HV ISNLIOASDUNINLIOEN -INAEL -9IO 15]
126
Sorsg SOp "Mon *zods sep jnw pun JyOTADSLLT SUp Jn® Sungnagdgg A9p Inu zz SI PEARL
127
Berechnungen für Zwecke der Oologie
16 900 08°9 T186°0 090°T 31 9100 ?6°0 gi gg 89°T DUngDuuDD SUyyumay
L'ZT 10°0 09° 196°0 090°T oT g70°0 610 er 0 06°T en. imauooyd sm.umDuooryg
L'ST 800 06°8 p88‘0 290°1 02T 9300 ET EI 1" 06°T saunwuuoo mais‘
601 80°0 79°7 g88‘0 190°T 89T 8200 62°1 EI PN, &17 sa.umnpoun DIUNAT
om. 800 0L'G 8LL‘O 190°7 E 8'97 1700 90° gi 6° 08% 597009 Br Bund
cp 00 09°9 968°0 090°T ‘97 1300 I7°1 Pl &'6 093 DINDDGNA SNODYMUH
128 Mathematischer Teil
m-g 0,175x4,51 2
A-B 461x305 cm = 0,561 mm (normal
0,198 mm). Also müßte die Schale fast dreimal so schwer und dreimal so dick
wie bei normalen Eiern gewesen sein, entsprechend einer Gänseeischale (Anser
anser). Das wäre aber auch ohne Messung und Wägung von HEINROTH bemerkt
worden. Hätte das 20 g-Ei statt des unwahrscheinlichen Verlustes von nur 1g deren
(normal 1,60 g). Daraus folgt d =
’
— 0,968 gesunken. Um dieses durch größere
2 verloren, so wäre I’ auf
18,6
Schalendicke auf über 1 zu bringen trotz des 10%,-Verlustes, so hätte T' ursprünglich
1,01
ST — 1,122 sein müssen. Dann folgt aus T = 1,122 = 1,02 + 0,0072Rg Rg
0,1020 | | |
era : 14,2%. Daraus Schalengewicht g= 142% von 208 —=2,84g
> 0,175 x 2,84 i
(normal 1,408) und d= A3OX2,S8 em — 0,401 mm, (normal 0,198 mm). Die
Schale hätte also doppelt so schwer und doppelt so dick sein müssen. — Leider
wurden die Eischalen nicht gewogen, die Schalendicken nicht gemessen. Sie hätten
das Rätsel gelöst. Schalenscherben werden ja leider unbeachtet weggeworfen, statt
sie auszuwerten. — Diese ausführliche Darstellung wollte zugleich zeigen, was man
mittels unserer Listen und Formeln selbst aus einer einzigen Angabe, dem Eigewicht,
herausholen kann, wie zuvor schon bei Aptenodytes forsteri die beiden Achsen.
e) Wieviel Prozent (p) seines Gewichtes muß ein Ei verloren haben, wenn es im
Wasser aufsteigt? Diese allgemeine Frage erhebt sich, sobald das spez. Gewicht des
Kies = 0,99 oder weniger wurde. Die Bedingung ist —— — 0,99. Also
+ — 0,99 Vol. 99 Vol.
an —1— — oder in Prozenten (81)
99 Vol.
100 — n -10 -=p (82)
Der gesuchte Prozentsatz hängt demnach vom spez. Gew. des Eies ab. Zum Beispiel
Struthio -G = 1073, Vo. = M0, also T= 1,142. p= 10 — 11a m 13,3%, von
G — 142,7 g. Verbleibendes Eigewicht ist 930,3, das durch das Volumen 940 dividiert
0,99 ergibt, wie verlangt.
Haushuhn (Gallus gallus domesticus) G — 58,5, Vol. = 54,0. Daraus T = 1,0835
99
und p = 100 1.0835
will man es nicht erst nach der Formel (16): Vol. = 0,524»AB? berechnen, so entnimmt
man das mittlere Rg = 9,6% aus den Maßlisten und findet-T' = 1,02 + 0,0072x 9,6
— 1,089 und p = 9,09%, von G = 5,32 g. Der kleine, für unseren Zweck bedeutungslose
Unterschied resultiert daraus, daß statt des unbekannten Rg dessen mittlerer Wert
verwendet wurde.
Die größte Gewichtsminderung wird bei Francolinus sephaena cogui mit seiner auf-
fallend dicken Schale verlangt. Ihr Rg = 28,5% ergibt T = 1,225 und p = 19,2%.
Bei diesem nur 16,1 g wiegenden Ei müssen also 19,2%, von 16,1 g = 3,10 g verdunsten,
ehe es sich vom Boden des Wassergefäßes erhebt. Die Verdunstungsquote blieb leider
unbekannt. Sollte sie weniger als 19%, betragen, so würde bei solch dickschaligen Franko-
linen als einziger Ausnahme selbst das fertig bebrütete Ei nieht aufsteigen.
— 8,63%, = 5,05 g. Ist das Volumen nicht bekannt und
ZONdEZ.
Erkrankungen der Zootiere
Verhandlungsbericht des XXIII. Internationalen Symposiums über
die Erkrankungen der Zootiere vom 24. bis 28. Juni 1981 in Halle/Saale
Zusammengestellt und bearbeitet von Rudolf Ippen und
Hans-Dieter Schröder
1981. 434 Seiten — 104 Abbildungen — 69 Tabellen — 4° — 75,— M
Bestell-Nr. 762 871 9 (2136/15) Ä
\
Seit 1959 werden jährlich Symposien über die Erkrankungen der Zootiere
veranstaltet. In Form von Verhandlungsberichten erscheinen sämtliche
zu den Symposien angemeldeten Referate bereits vor dem jeweiligen
Symposium und bieten somit eine sehr gute Diskussionsgrundlage.
f -_
r
Bitte richten Sie Ihre Bestellungen an eine Buchhandlung
_ AKADEMIE-VERLAG
DDR -1086 Berlin, Leipziger Str. 3—4
Symposium und bieten somit eine sehr gute Diskussionsgrundiage.
Erkrankungen der Zootiere _
Herausgegeben von R. Ippen und H.D. Schröder |
1982. 482 Seiten — 97 Abbildungen — 95 Tabellen — DE x 20. a,
DDR 80,— M; Ausland 80, — DM
Bestell-Nr. 763 053 6 (2136/ 16)
Seit 1959 werden jährlich Symposien über die Erkrankungen der Zoot
veranstaltet. In Form von Verhandlungsberichten erscheinen sä tl
zu den Symposien angemeldeten Referate bereits vor dem jeweil
Bitte richten Sie Ihre Bestellungen an eine Buchhandlung
AKADEMIE-VERLAG BERLIN
DDR-1086 Berlin, Leipziger Str. 3—4
=
N
IR
DBUCH DER
; x ER
“© HERAUSGEGEBEN UND ERGÄNZT VON
E
Prof. Dr. WILHELM MEISE-
i Zoologisches Institut und Zoologisches Museum Hamburg
Lieferung 43
7 ) er 5
B 7 N «
AKADEMIE-VERLAG - BERLIN
39
r \ BER;
e N:
iR, FE
[ 7 I b
v a en “ %
Rufe 7 | ‚ r 4 {R . { % 7 } ) E a 7 ® h %
N 0 1 48. Lieferung, ’- "eu sen Se
‚Seite 19-92°° ee.
x Be!
10. Die Eikurven Szielaskos und seine Bildungsgesetze der Eigestalt . .- ". 2.2...
11. Die durchschnittliche Eigestalt (ioretalar) N a > 0 er Do
PHBAmIImeNnkassung .; 72° 3 Kane on ee, 5102 N a SE 2 Re en
Einige Ergänzungen aus neuer Literatur...» .. 222.2... Ye ng 0 EEE rn 5, En: 14
Zitierte Literatur-des Hauptteils . . =. .1....00.0. 202 2 I ee
"Schrifttum der Ergänzungen... . U... Sohn 2 2 a
Personenreister 2.0... el re Be NE NE a y\ Pr!
SEICHWOTETERIBTET ud, can en ne N ER BP:
Register der wissenschaftlichen und der deutschen Tiernamen .... . ‚u Die
Setöfehler und Berichtigungen ..': : 24. 2 2. „ua 2.00% ER
Nachträge zu Band I „Handbuch der Dolagie” a, ah Sr EA a
ISBN 3-05-500152-4 '
H Erschienen im Akademie Nerlag Berlin, DDR - 1086 Berlin, Leipziger Straße er
A © Akademie-Verlag Berlin 1986
z Lizenznummer: 202 - 100/532/36
Printed in the German Democratic Republic
Gesamtherstellung: VEB Druckhaus „Maxim Gorki“, 7400 Altenburg
LSV 1365
. Bestellnummer: 736 636 4 (3037/43)
7 00950 N
Berechnungen für Zwecke der Oologie 129
Auch die Frage nach der Reihenfolge der Eiablage im Gelege läßt sich mittels des
spez. Gew. der einzelnen Eier beantworten, wenn diese bei der Entnahme aus dem
Nest gewogen und gemessen wurden. Die Volumina ergeben sich aus Vol. — 0,5240AB?,
die spez. Gew. aus Eigewicht durch Volumen. Das niedrigste T' weist auf das zuerst
geleste Ei, die Reihenfolge ist wie die der zunehmenden T'. Oder man berechnet mittels
unserer strengen Formel die Frischvollgewichte und vergleicht sie mit den tatsächlichen
Gewichten. Den größten Gewichtsverlust hat das zuerst gelegte Ei. So lassen sich auch
die Fragen lösen, in welcher Reihenfolge die Eier des Geleges kleiner oder leichter
wurden oder schwächer gefärbt oder die Eigestalt sich änderte, ob schon vom ersten
Ei an gebrütet wurde, ob es sich bei Gewichtsangaben mit Maßen im Schrifttum um
frischvolle Eier handelte oder nicht. Alles das ohne die Wasserfüllungsmethode und
ohne die Eier selbst in der Hand haben zu müssen. — Die variable Mischung von Dotter
. und Eiklar (Eiweiß) bleibt ohne Einfluß, weil das spez. Gew. des Eiinhalts in allen
Verhältnissen praktisch konstant ist. 40%, D und 60%, E gibt y; = 1,036. — 50%, D
und 50% E gibt 1,035. — 60%, D und 40% E gibt 1,034.
10. Die Eikurven Szielaskos und seine Bildungsgesetze der Eigestalt
a) Normale, abnorme und monströse Eigestalten nach Szielasko. Schon vor rund
135 Jahren vermutete der Mathematiker J. STEINER dem Physiker und Philosophen
G. TH. FECHNER gegenüber, daß alle Längsschnitte der Eier sich unter den mannig-
faltigen Gestaltungen des Cartesischen oder Steiner-Ovals finden. Es ist dieses eine
sehr schwer zu bearbeitende Kurve vierter Ordnung mit der Grundgleichung
S;ı + S,;m —= Constans (83)
(ähnlich der der Ellipse S; — S; = Constans), (84)
wo m eine Konstante, S, und S, die radii vectores der Kurve sind. Der um die Oologie
verdiente Arzt Dr. A. SZIELASKO (1902, S.5) griff den Gedanken auf, untersuchte ihn
mathematisch und bewies in mehreren Arbeiten seine prinzipielle Richtigkeit. Der Be-
weis liegt in der Kongruenz vieler direkt abgezeichneter Eikurven mit den nach Cartesius
und Steiner benannten Ovalen, welche lediglich aus den Achsen L (= unser A) und B
nebst der Dopphöhe b der abgezeichneten Eier mittels Szızzaskos Formeltafeln
konstruiert waren bzw. aus den Verhältnissen L/B und a/b, wa=L-.b. Alle Ei-
gestalten, die obiger Gleichung entsprechen, nennt SZIELASKO „normal (1920). In
vielen anderen Fällen (ich rechne dazu 37%, der 1368 von ihm als ‚möglich‘ bezeich-
neten und in seinen „speziellen Formentafeln‘“ zahlenmäßig beschriebenen Gestalten)
besteht die Eikurve nur zum größten Teil aus einem Stück Steineroval, und zwar
immer am stumpfen Ende, der Rest aber, das schlankere Ende, aus einem Hyperbel-
zweig, der sich ohne Einschnürung anschmiegt. Für diesen gilt S, — S;m = Constans.
Auch die Formeln für solche Eigestalten erarbeitete SZIELASKO; er nennt solche Ge-
stalten „abnorm“. Diese Bezeichnung kann jedoch nur besagen: abweichend vom
Steineroval; denn hierher gehören all die vielen Arten mit ständig kreisel- oder birnen-
förmigen und konisch langgestreckten Eiern. Alle sonst noch vorkommenden Eigestalten,
insbesondere solche, bei denen die Dopphöhe weniger als ein Drittel der Längsachse
ausmacht, bezeichnet der Autor als „monströs‘. Er beschränkt diesen Begriff also nicht,
wie es sein sollte, auf ausgesprochene Mißbildungen, sondern legt ihn auch allen Eiern
bei, die sich seinen Formeln nicht fügen. Das tun nach meinen eigenen Erfahrungen
aber auch gar manche Eier mit besonders starker Zuspitzung, ungewöhnlicher Streckung
und mit auffallend weit nach oben gerückter Breitenachse, ohne daß man sie nun gleich
monströs nennt. Solche gibt es z.B. bei Aptenodytes, Alca, Hydrophasianus, Colinus.
9 Oologie, 43. Lieferung
ku
Fa
Hr ER
w
. #7
130 Mathematischer Teil “ .
Auch zweispitze Eier bei Colymbus (recte Podiceps), Ardea u. a. entsprechen nicht der
Formel. — Aber jedenfalls hängt die Eigestalt nicht nur vom Zufall ab, sondern sie ist
im Prinzip mathematisch bestimmt. Diese Erkenntnis verdanken wir SZIELASKO. —
Näheres geht aus dem folgenden Kapitel hervor, wo auch eine Zeichnung die einschlä-
gigen Begriffe und ihren Zusammenhang wohl deutlicher und vollständiger zur Anschau-
ung bringt als bei SzIELASKO (1920).
Seine Absicht, für die Beschreibung der Eigestalt statt der Worte je vier bzw. sieben
Zahlen einzuführen, scheiterte an deren Unanschaulichkeit. Auch die Erwartung, seine
Ergebnisse für die Systematik verwerten zu können, blieb unerfüllt. Nur bei zwei Arten
gelang bisher eine auch mathematisch begründete Trennung: Alca hat immer beide
Brennpunkte innerhalb der Eikurve, Uria stets den einen außerhalb. So erscheint der
praktische Nutzen der umfangreichen, mühseligen Arbeit SZIELASKoSs gering, ihr wissen-
schaftlicher Wert, das Auffinden einer Gesetzmäßigkeit, bleibt m. E. unbestritten.
Irrig ist aber seine Meinung, daß die Natur einseitig schiefe Eier, also mit unsymme-
trischen Längsseiten, nicht erzeugen könne, und daß Einsehnürungen am spitzen Ende
„reine Phantasie‘ seien. Von beiden Erscheinungen gibt es jedoch in einer ganzen Anzahl
Nachweise. Beispiele werden im Allgemeinen Teil des Handbuches beigebracht, freilich
sind sie als Abnormitäten mathematisch nicht erfaßbar. — OTTow (1950, S. 67) „scheint
es mehr als zwecklos, wenn SZIELASKO sich bemühte, die artlichen Eiformen in starren,
mathematisch charakterisierten Schalenkurven festzulegen. Funktionelle Muskelvor-
gänge lassen sich nicht in dieser Weise typisieren‘‘. Da aber SzieLasko 1368 mögliche
Eigestalten zahlenmäßig beschreibt, von denen freilich sich viele sehr ähneln, wird man
m.E. nicht von starren Kurven sprechen können. Grundsätzliche Zweifel an der
mathematisch beschreibbaren Eigestalt als Zweig eines Cartesischen Ovals, z. T. mit
Hyperbelanhang, gibt es für mich nicht mehr, nachdem ich die verschiedenen Formen-
typen nachgeprüft habe. Freilich ergaben sich auch Ausnahmen, die aber die Regel als
solche bestätigen, z. B. wenn bei Pinguinus impennis und Grus americanus die schlanken
Enden auf der Zeichnung etwas zu spitz ausfielen gegenüber der Photographie, und
ausgeprägte Zweispitze nicht erfaßt werden.
Alle 24 Formeln SzıELAsKos hier abzudrucken, wollen wir uns versagen, da sie ohne
die 35 Formentafeln kaum jemandem etwas nützen. Diese und jene finden sich in
SZIELASKOS Buch aus dem Jahre 1920 entwickelt, von dem gleich weiter die Rede sein
wird.
b) Zeiehnung von Eikurven (Längsschnitten) nach SzıeLaskos Formentafeln. In
seinem Buche „Die Gestalten der normalen und abnormen Vogeleier‘‘ als der ab-
schließenden Zusammenfassung seiner langjährigen und schwierigen Bemühungen um
diesen Gegenstand gibt SzIELASKo (1920) 13 Kapitel mit mathematischen Erörterungen,
die leider nicht frei von Druckfehlern und Unklarheiten, daher auch nicht für jedermann
verständlich sind. Die Schlußkapitel 14 und 15 bringen die zahlenmäßigen Ergebnisse,
zuerst die „Allgemeine Formentafel“, eine Art Inhaltsverzeichnis zu den dann folgenden
33 Seiten der „Speziellen Formentafeln“. Wenn nun SZIELASKo selber in einleitenden
Worten den nicht mathematisch interessierten Lesern empfiehlt, die 13 ersten Kapitel,
also den gesamten Text, ganz zu überschlagen und sich sogleich den bloßen Zahlenwerten
der Formentafeln zuzuwenden, so kann ich diesen gut gemeinten Vorschlag nur wärm-
stens unterstützen. Man vermeidet einen großen, für die meisten Leser nutzlosen Zeit-
verlust.
Aber mit den Formentafeln allein kann man dann auch noch nicht viel anfangen, weil
in Kapitel 14 und 15 weder eine klare Anleitung zum Zeichnen nach den Zahlenwerten
in den Tafeln, noch eine alle nötigen Begriffe anschaulich machende Zeichnung gegeben
ist. Beides möchte ich hier nachholen, ohne auf die sehr komplizierten Formelentwick-
lungen und auf den Text SZIELASKoS einzugehen.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 131
Im voraus sei aber bemerkt, daß wir uns hierbei darauf beschränken, aus den in den
Tafeln gegebenen Szielasko-Zahlen die durch sie charakterisierte Eigestalt zu zeichnen,
nicht aus den Maßen eines gegebenen Eies mittels der Formeln die zugehörigen Szielasko-
zahlen zu erreehnen. Das nämlich unterläßt der Autor in seinem Buche selber. Er hilft
sich so, daß er aus 2 oder 3 gegebenen Argumenten Eikurven zeichnet und diesen die
gesuchten übrigen Größen im wesentlichen graphiseh entnimmt, um sie dann in Tabellen
zusammenzustellen. Dies offenbar wegen der ganz außerordentlichen Schwierigkeit der
Auflösung der erforderlichen vier Gleichungen für die Eikurve als Steineroval, das eine
Kurve vierter Ordnung darstellt. Eine solche Auflösung hat SZIELASKO nur 1902 in
seiner mathematisch-oologischen Studie ‚Die Bildungsgesetze der Vogeleier bezüglich
ihrer Gestalt‘ gegeben, ähnlich 1905. (Ich habe eine andere Lösung, die ebenso weitläufig
und schwer verständlich ist.) Mit Hilfe z. T. zwölfstelliger Zahlen rechnet dort SZIELASKO
zuerst die beiden Abschnitte f = 24,1 und g = 12,1 aus, also kleine dreistellige Zahlen,
wozu drei Seiten im Druck benötigt werden. Schon das führt zu einer abschreckenden
Vorstellung von der Sachlage. Deshalb behalten wir in den folgenden Ausführungen
SZIELASKOS Buchstabenbezeichnungen bei, um dem weniger geübten Leser des Buches
das Vergleichen nicht noch mehr zu erschweren.
Zweck der Zeichnung kann zunächst nur sein, ein dem Steineroval entsprechendes
Bild eines Eilängsschnittes zu erlangen, für den nur die beiden Verhältniszahlen L : B
und a:b gegeben sind. Diese dienen zum Aufsuchen der weiter nötigen Zahlenwerte
in den Formentafeln und bestimmen allein schon die Gestalt. Um das Bild auch in
richtiger Größe zu erhalten, bedarf es nur noch der Größe der Längsachse. Die Formen-
tafeln legen L —= 100 zugrunde. Für andere Werte von L sind alle Szielaskozahlen
(C, g, f, T, j und Ex) umzurechnen, z. B. für L = 68 durchweg mit 0,68 zu multipli-
zieren, mit Ausnahme von m, welches eine nur von L/B und a/b abhängige Konstante
ist in der Grundgleichung des Steinerovais: S + Sm = C. Gegebenenfalls rechnet man die
beiden Verhältnisse aus den Eiachsen und der Dopphöhe b, welche drei Größen ebenfalls
Gestalt und Größe des Eies vollständig bestimmen.
S, ist der vom Brennpunkt F am stumpfen Ende ausgehende, S, der vom Brenn-
punkt G am spitzen Ende ausgehende Strahl (radius vector) nach einem Kurvenpunkt,
der durch den Schnitt der beiden Strahlen erhalten wird. Alle Kurvenpunkte werden
dureh solche Schnitte konstruiert. Die speziellen Formentafeln geben nun für sämtliche
bei Eiern möglichen Verhältnisse L/B und a/b unter Zugrundelegung einer Längsachse
L = 100 die zur Zeichnung der einfachen Eikurve nötigen Zablen © und m der Grund-
gleichung sowie g und f an. Diese sind die beiden Abschnitte, in welche die Exzentrik
E=FG=f+g (85)
der Kurve durch den größten Breitendurchmesser B zerlegt wird. Die immer einzu-
haltende gegenseitige Lage dieser Linien geht aus unsrer Zeichnung (Figur 5) hervor.
Auf einer geraden Linie trägt man zuerst die Strecken f und g auf und gewinnt
dadurch die Punkte F, I und G, also die beiden Brennpunkte und den Schnittpunkt
der beiden Achsen, wobei FG =f+g= E die Exzentrik des Steinerovals ist.
Nun berechnet man Strahlenpaare (radii vectores) nach der Grundgleichung in
der Form
Ss =C— m (86)
Für S, setzen wir die beliebigen Maße 10, 20, 30 usw. an in einer kleinen Tafel und
schreiben daneben das jeweils m-fache, also bei mı = 0,432 die Zahlen 4,32, 8,64,
12,96 usw. Diese m-fachen von der Konstanten © abgezogen ergeben den zweiten
Strahl, also S,. Mit den ersten Strahlen (S, = 10, 20, 30 usw.) zieht man nun um G
als Mittelpunkt Kreisbögen und numeriert sie entsprechend mit 10, 20, 30 usw., um
sie nicht zu verwechseln. Von Punkt F aus werden dann mit den jeweils zugehörigen
9*
132 Mathematischer Teil
Ma» Ex.=577: halbe Exzentrik
der Hyperbel
2161:
> 8....A=395=große Halbachse |
fg, A
> KIA
Da
(der Hyper
15
. ö
Se =
= G an :
A o 12103 & m
S = 2,
Beim Steineroval fällt O und V zusammen E = f+g=96,3
b+a=1=102,3 B=.,758
a-B- 158 L: B=138
Fig. 5. Aptenodytes patagonica. Zusammengesetzte Eikurve. 0,73 nat. Größe. Original Schönwetter. —
a+b=L=102,8mm; a:b=158; L:B=1,36; E=f+g=9%,3; B= 75,7mm. (Beim
Steineroval fallen O und V zusammen.)
Strahlen S, Zirkelschläge auf die Kreisbögen gemacht, wodurch sich die Kurven-
punkte als Schnittpunkte ergeben, und es sich zeigt, wo noch weitere solche erwünscht
sind, für die man dann wie zuvor Strahlenpaare berechnet und zum Schnitt bringt,
bis genügend Punkte für einen glatten Kurvenverlauf erhalten werden. Der Pol am
stumpfen Ende (Punkt A) wird erhalten durch Absetzen der gegebenen Dopphöhe
(b) von I.aus, nötigenfalls zu berechnen aus
L
be,
1-+a/b
(87)
Punkt V = Pol am spitzen Ende ergibt sich durch Abtragen der gegebenen Strecke a,
nötigenfalls zu berechnen aus (a/b) - b, wobei sich die Eilänge gleich L, im angenomme-
nen Beispiel also gleich 100 ergeben muß. Etwaige Versehen beim Rechnen oder Zeichnen
machen sich auch durch die dann fehlende Stetigkeit der Kurve sofort bemerkbar.
Punkt C als Endpunkt der Breitenachse ergibt sich durch Abtragen der halben
Breitenachse auf der Senkrechten in Punkt I, nötigenfalls nach Berechnung von B
mittels der Formel B=L dividiert durch das gegebene L/B. — Ist L nicht gegeben
oder will man es benutzen zur Prüfung der erreichten zeichnerischen Genauigkeit,
so berechnet man es aus
L = 2C/(1 + m). (88)
Geringe Abweichungen werden sich oft ergeben, einmal aus kleinen Fehlern im Ab-
tragen der Strecken, dann auch, weil die Tafelwerte zuweilen eine Dezimalstelle zu
Berechnungen für Zwecke der Oologie 133
wenig haben und durch Abrundung z. T. unscharf wurden. Als Kontrolle dienen die
Formeln
@—m-E
TERLEN EN Ge 9
p a (89)
und
02 SE
= —— 5 90
4 1+m =
Genau derselbe Vorgang wiederholt sich beim Zeiehnen der ‚„abnormen Eigestalt“
d.h. der durch ein Hyperbelstück ergänzten Steinerkurve. Von den 1368 durch
SZIELASKO (1920) bearbeiteten Eigestalten sind 504 solch „abnorme“, sie sind also
nicht, wie GROSSFELD (1938, S.45) meint, „sehr selten‘. Dabei bemerkt man bald,
daß sich zwar die richtige Länge der Breitenachse, aber eine ganz andere (irrationale)
Längenachse ergibt, nämlich A(B), als Folge der Lage eines der Brennpunkte außerhalb
der Eikurve, nämlich von G. Dieser Brennpunkt ergibt sich aus g bzw. aus (£ + g). Das
ist meistens der Fall bei stark zugespitzten Eiern. Die Ergänzung der Länge erfolgt
durch eine angesetzte Hyperbel.
Ohne daß man das im voraus zu wissen braucht, geben die Formentafeln von selbst
für diese Fälle drei weitere Streckenzahlen, nämlich T als Tangente vom Punkt G aus
an das zunächst konstruierte Steineroval, dann j als auf der Längsachse von Punkt
G aus in abgewandter Richtung abzutragende kleine Strecke, und „Ex‘“ als halbe
Exzentrik der Zusatzhyperbel, nicht zu verwechseln mit der Exzentrik „E*=f+g
— FG (Formel 85) des Steinerovals. Unsere Figur 5 macht die Lage dieser drei Strecken
klar, von denen ‚Ex‘ nur rechnerisch, aber j und T auch zeichnerisch gebraucht
werden. — Das Steineroval oder sein erforderlicher Teil wird dabei immer mittels
Polarkoordinaten (S, und $,) konstruiert, der Hyperbelteil aber mittels rechtwinkliger
Koordinaten (x und y), beides, weil es so am einfachsten zum Ziel führt, wie das folgende
vollständige Beispiel zeigen wird.
Gegeben sei L —= 102,8 mm, B = 75,7 mm, Dopphöhe b = 39,9 mm. Daraus folgt
a — L— b = 62,9mm, ferner L/B= 1,36 und a/b = 1,58. Die für diese beiden
zusammengehörigen Verhältniszahlen aus den Formentafeln (SziELasko 1920, S. 97)
entnommenen Werte sind in nachstehender Tabelle eingeschrieben mit der Überschrift:
L = 100. Daneben kommen dieselben Zahlen mit 1,028 multipliziert (Überschrift: L
— 102,8), weil die gegebene Eilänge nicht 100, sondern 102,8 werden soll. Nur die
absolute Zahl m bleibt unverändert beibehalten (siehe die anschließende Liste).
In der kleinen Werteliste sind willkürlichlang gewählte Strahlen S, mit m = 0,293
multipliziert und von C = 66,50 abgezogen, wodurch sich die zugehörigen zweiten
Strahlen S, ergeben. Mit den S, werden wieder Kreisbögen um den Brennpunkt G
L = 100 |L=102,8|| $S, mS, S, = S, mS, Sı
mS,
& 64,7 66,5 10 2,93 63,57 90 26,37 40,13
g 83,6 86,0 20 5,86 60,64 | 100 29,30 37,20
f 10,0 10,3 30 8,79 rt) 32,23 34,27
I
0,293 0,293 40 11,72 54,78 | 120 35,16 31,34
T 70,7 72,7 50 | 14,65 51,85 |125 36,63 29,87
] 29,6 30,4 60 17,58 48,92 | 125,8 | 36,90 29,60 Punkt A
Ex 56,2 92,7 70 20,51 45,99 45 13.20 53,30
s0 23,44 43,06 | 43 12,60 53,90
134 Mathematischer Teil
gezogen und mit den von F ausgehenden Strahlen S, zum Schnitt gebracht. Dadurch
ergeben sich die Punkte des Steinerovals, in diesem Falle dessen Anteilan der zusammen-
gesetzten Eikurve mit der oben erwähnten verkürzten Eilängsachse A(B), nachdem
wir zuvor, wie ganz am Anfang angewiesen, auf einer geraden Linie mittels f = 10,3
und g = 86,0 die Punkte F, I und G dargestellt hatten.
Der Pol am stumpfen Ende, Punkt A, ergibt sich, wenn nicht schon aus den Strahlen-
schnitten, auch aus (Formel 87) b=L:(a/b + 1) = 39,9, oder von Punkt I aus
mittels
C— m(f+9)
1+m
— 29,6 von F aus auf der Längsachse abzutragen. Falls (wie nur ausnahmsweise denkbar)
L nicht gegeben ist, rechnet man L = 2C: (1 + m) (Formel 88), hier — 102,8.
Punkt V als „spitzer Pol“ folgt aus a = b - (a/b) hier = 62,9, ebenfalls von Punkt I
aus abzutragen, oder aus dem Zusatzstück
Br (91)
9 7
re ee ern (92)
1° m?
oder von G aus mittels
C—(f-+9)
eV eLe 93
4 TH in, (93)
natürlich nur, wenn a und b nicht direkt gegeben oder Kontrollen beabsichtigt sind.
Punkt C als Endpunkt der Breitenachse wird, falls diese nicht direkt gegeben ist,
aus YgB=L:2(L/B) erhalten zu 37,85, oder, wenn er sich schon aus den Strahlen-
schnitten ergab, geprüft.
Nunmehr gehen wir zur Konstruktion der zusätzlichen Hyperbel über, indem zu-
nächst rein zeichnerisch von G aus die Tangente T = 72,7 an das Steineroval gelegt
wird, was den Berührungspunkt P ergibt. In den vielen Fällen, wo der spitze Pol
V des Eies ganz nahe bei G liegt, kann man schon ohne weiteres den Hyperbelbogen
von P nach V nach Augenmaß zeichnen, da er ja unterhalb der Tangente liegen muß
und da nur wenig Spielraum für den Verlauf der Hyperbel bleibt. Unser Beispiel wurde
aber nicht so gewählt, wir müssen streng verfahren. Dazu zeichnen wir mittels j = 30,4
den Punkt M (Hyperbelmittelpunkt) als Nullpunkt für die nun zu berechnenden recht-
winkligen Koordinaten der Hyperbelpunkte, die sich wie alle diese Rechnungen mittels
Rechenschiebers am schnellsten und ausreichend genau ergeben. Für den Tangenten-
berührungspunkt P kann man die Koordinaten x, und y, direkt aus SZIELASKOS
Argumenten berechnen. Es ist
{ j C(mT — C)
An he Segen, f (94)
? 66,5(0,293 x 72,7 — 66,5) #
hier = 30,4 + 86,0 N ae Bu Tr
ie + 10,3 103 x 860 95,5
yı = VE — (x, — j)? = Y72,7? — 65,1? — 32,4. (35)
Die Abszissen x werden von M aus in der Richtung nach Punkt A abgetragen, die
Ordinaten y rechtwinklig dazu, nachdem sie wie folgt berechnet worden sind nach der
Mittelpunktsgleichung der Hyperbel
x? y? au
A2 b? Ir
(96)
Berechnungen für Zwecke der Oologie 135
A und b sind hier die halben Achsen der Hyperbel, nicht zu verwechseln mit den gleichen
Buchstaben in anderer Bedeutung bei den vorangegangenen Erörterungen.
Die große Halbachse =q +j = MV=A (97)
folgt aus den Maßen der Zeichnung zu 156,3 — 102,3 = 53,5, die kleine Halbachse
ist
b = YEx? — A? — 21,61 (98)
und
ee Re
y en: (99)
In dieser Formel nimmt man für x belie-
A2 — 2882: DB 2021,61 = 0,404 bige Werte, aber natürlich größer als A, an
A 53,5 und errechnet damit die einzelnen zugehöri-
gen y, wie es für unser Beispiel in neben-
= | = | Vz? — A? y stehendem Täfelchen geschehen ist. Da-
mit sind dann genügend Punkte der gan-
es 2 a = zen Eikurve erhalten, die beliebig vermehrt
= 26 en ee werden können, wenn dafür Bedarf vorliegt.
> 8 a u: Das hier durchgeführte Beispiel war nicht
65 4225 36,92 14,90 g > ı |
80 6400 59,49 24.03 willkürlich gewählt, sondern die gegebenen
Stücke L/B = 1,36 und a/b = 1,58 sowie
L = 102,35mm sind von einem Ei des
Königspinguins (Aptenodytes patagonica) meiner Sammlung entnommen. Die dicke
Eihälfte gleicht einer Halbkugel, die schlanke einem Kegel mit abgerundeter Spitze,
womit so ziemlich die absonderlichste Gestalt vorliegt, die ein normales Vogelei über-
haupt annehmen kann. Die genaueste Abzeichnung des Eies, als Pause auf die vor-
stehend mathematisch konstruierte Kurve gelegt, ließ die Übereinstimmung beider
Zeichnungen mit aller nur wünschenswerten Genauigkeit erkennen! Der Beweis dafür,
daß es sich bei irgend einem Vogelei um ein Steineroval handelt, ergibt sich auch
zahlenmäßig, wenn in die genaue Abzeichnung oder Photographie die beiden Brenn-
punkte F und G eingezeichnet werden. Die Summe der beiden radii vectores wird
dann für alle Kurvenpunkte konstant sein und der Forderung S;, + mS, — Constans
(Formel 83) entsprechen, was ja die Charakteristik des Steinerovals ist. — Zur exakten
Besehreibung der Gestalt eines Vogeleies sind demnach die Werte L, B und b, also
die Länge, die Breite und der Abstand des stumpfen Pols von der Breitenachse (die
Dopphöhe) vollkommen ausreichend; eine anschauliche Vorstellung aber gibt erst
die Zeichnung nach SZIELASKos Methode, wenn nicht ein Photo oder ein auf anderem
Wege gefundenes genaues Abbild vorliegt. Ein solches von Kleinen Eiern anzufertigen
ist ebenso schwierig, wie seine mathematische Konstruktion. Man muß da schon in
größerem Maßstab zeichnen. Andererseits verlasse man sich nicht auf nach Augenmaß
gemalte Bilder; denn wegen ihrer natürlichen Wölbung erscheinen alle Eier dem Auge
schlanker. Bei photographischen Eibildern müssen die direkt gemessenen Achsen,
mindestens die Länge, angegeben sein, da leicht eine Verzerrung durch Nichtparallelität
von Photoplatte und Eilängsachse eintritt. Aber natürlich ist alles dies nur dann
erforderlich, wenn feinere Untersuchungen über die Eigestalt angestellt werden sollen.
Das kann auch so geschehen, daß man das Ei photographiert und das Bild vergrößert,
darin die Längs- und die Querachse einträgt, dann ihr Verhältnis sowie dasjenige
der beiden Abschnitte a und b der Längsachse berechnet und danach wie vorstehend
beschrieben die Kurvenkonstruktion gleich auf dem Eibild bewirkt. Kleinere Ab-
weichungen der beiden Zeichnungen beeinträchtigen nicht die Bedeutung der wissen-
schaftlichen Erkenntnis, daß die Eigestalt mathematisch bedingt ist.
136 Mathematischer Teil
Alles dies läßt sich natürlich auch kürzer sagen. Aber da die meisten Oologen viel-
leicht mathematisch weniger belastet sind, erschien mir eine so ausführliche Beschrei-
bung doch angebracht. Wer tiefer in dieses mathematisch schwierige Problem ein-
dringen oder genauere Zahlenwerte selbst errechnen will, muß schon zu SZIELASKOS
Buch mit seinen 24 Hauptformeln und vielen Zwischenformeln selbst greifen und
sich durch die nicht immer klare Darstellung der 80 Seiten des Textes durchringen.
Er wird dabei viel Interessantes, aber auch allerlei auszusetzen finden.
11. Die durehschnittliche Eigestalt (,„‚Normalei‘)
Konstruiert man (Fig. 6) die theoretische Eikurve aus dem* Durchsehnittswert
aller Achsenverhältnisse (k — 1,38) und dem Mittel aus allen Abschnittsverhältnissen
(a:b = 1,22), so ergibt sich eine dicke, nahezu elliptische, also beiderseits stumpfe
Eigestalt, ähnlich, aber ein wenig länglicher, als bei Bussard- (Buteo-) und Adler-
(Aquila-)eiern. Legt man die Maße 100 x 72,5 mm zugrunde, also das mittlere k = 1,38,
KRÜMMUNGSRADIUS
I5mm
=1,38
=k
A:B
50,0mm
12
Breitenachse
A
2
jo}
a:b
|
KRÜMMUNGSRADIUS Smm
A
a+b
B=36,3mm
Fig. 6. Das Normalei. Etwa 0,5 nat. Größe. Original Schönwetter. — Eigestalt nach dem Durch-
schnitt von 400 europäischen Arten, also wohl aller Eier überhaupt. A = 50,0 mm; B = 36,3 mm;
ce = 18,5 mm; d = 10,0 mm; a = 27,5 mm; b = 22,5 mm. Dies entspricht etwa der Hälfte der
natürlichen Größe. e = 1,22; k = 1,38. Die beiden letzten Werte bleiben für alle Maßstäbe
unverändert.
dann teilt die größte Breitenachse die Längsachse in 45 und 55 mm entsprechend
dem mittleren e = 1,22, und die Krümmungsradien an den beiden Polen sind 30 mm
und 18 mm. Die Ecken des die Kurve umschließenden Rechtecks stehen am stumpfen
Ende 17 mm, am anderen 20 mm von der Kurve ab. Hiermit sind acht Punkte dieser
gegeben, ausreichend für eine praktisch genügende Zeichnung, da zwischen diesen
Punkten kaum Raum für eine Abweichung von der gegebenen Eigestalt bleibt, die
vielleicht die urtümlichste ist. — Da die angegebenen Dimensionen am Ei direkt meßbar
sind (Meßkluppe und kleiner mm-Maßstab für die Ecken), ergibt sich eine einfache
Methode zur Charakterisierung von Eigestalten etwa in brieflichen Mitteilungen,
durch gemessene Angaben von B, a, b, c,d.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 137
12. Merkwürdige Vereinfachung oologischer Formeln
Für das durchschnittliche Achsenverhältnis k — 1,382 nehmen die strengen Formeln
für elliptische Eigestalten überraschend einen Ausdruck an, in dem die Kreiszahl
rz = 3,1416 verschwunden ist, die, sonst in A und K versteckt, in unserer Volumen-
formel 15 als z — 0,5236 auftritt. Für k = 1,382 wird nämlich streng
U=2A+B (100)
(weil U = 2A + B und‘ im Durchschnitt = 1 ist).
O = 4B? (101)
(weil © = B?Ke und für k = 1,382 K = 4,00 ist, e —=1).
B4
=
Vo In (102)
B 1
(weil wegen A — 1,382 B und Ionen 0,7236 das Volumen 0,5236 AB? den
2 1 B B*
5) © 2 3 ä Je, — E 3 — . 3 zZ — . 3 ——— HR
Wert 0,5236 x 1,382 B? erhält, 0,7236 B 138 B N B a)
Bei willkürlich gewählten Zahlen und deren Auslegungen dieser kann Spielerei
leicht seltsam Erscheinendes in die Beziehung zwischen den Größen verschiedener
Dinge oder Begriffe hineingeheimnissen. Obige Fälle sind aber auffallend, weil das
Überraschende sich nicht auf beliebig gewählte Zahlen, sondern auf den Durchschnitt
von in der Natur gegebenen Zahlenwerten (U, O, Vol.) bezieht.
Ein seltsamer Zufall ist auch, daß die in unserer Eigewichtsformel als Additions-
konstante auftretende Größe Y
für den Durchschnitt von y (= 2,10) den Wert
a
0,5236annimmt gleich =: welche Zahl in derselben Formel (vgl. Formeln 20 und 24)
—1
als Faktor auftritt (G = 1,03 . 0,52369 AB? + Y- 9), oder daß 1,382? = 1: 0,5236,
Y
oder daß die Zahl 1,382 auch das Verhältnis ausdrückt zwischen den durchschnitt-
lichen q beim Kuckuck (Cuculus canorus) und seinen Wirten (2,21: 1,60). Oder daß
das spez. Gew. des Eiinhalts praktisch konstant bleibt für Dotter und Eiweiß in jedem
beliebigen Mengenverhältnis, obwohl ihre spez. Gew. etwas verschieden sind.
Zusammenfassung
1. Die Oologie kann bei der Lösung biologischer Fragen nicht auf Messungen,
Wägungen und Berechnungen verzichten. Die Berechnungen gehen vom Rotationsel-
lipsoid aus. Die Formeln von BERGTOLD und GROSSFELD für das Eigewicht G führen oft
zu größeren Fehlern als die Formel SCHÖNWETTERS, wofür Gründe angeführt werden.
Aber auch mit den hier gebotenen Formeln sind nur Näherungswerte zu erzielen. —
Der Benennung von Eigestalten bei Des Murs wird eine eigene entgegengesetzt.
Zwischen den normalen Eigestalten Kugel, Ellipsoid, Zweispitz, Langoval, Breitoval,
Kreisel und Walze gibt es Übergänge. Die Gestalt weicht oft sogar beinahen Verwandten
voneinander ab. Unter ihren zahlreich vorkommenden Abnormitäten sind nur Zwerg-
und Rieseneier für die Berechnungen wichtig, nicht aber die in einer Allgemeinen
Oologie zu behandelnden Eier mit Einschnürungen am spitzen Ende, die unsymme-
trischen und die monströsen oder die mit beschalten Einschlüssen. — Bei der zahlen-
138 Mathematischer Teil
mäßigen Beschreibung der verschiedenen Eigestalten und der Berechnung ihrer Volu-
mina, Gewichte, Oberflächen und Schalendicken spielen vier Gestaltsfaktoren eine
Rolle, k (= up und e | — 2) mit der Dopphöhe b, dem kleineren Abschnitt
Breite B b
der durch die größte Querebene in a und b geteilten Längsachse A, sowie die Reduk-
» . Eivolumen Eioberfläche
tionsfaktoren 9 c >
“ Ellipsoidoberfläche
Ihre Ermittlung wird vorgeführt und das Ergebnis zum Teil in Tabellen zur Verfügung
gestellt.
53 Ellipsoidvolumen ni
2. Das Volumen des Eies wird nach der Formel V = 0,5245 - AB? bestimmt, das des
Eiinhalts und der Eischale nach ähnlichen Formeln.
3. Die Methode, das Gewicht des Eies, das noch keine Luftkammer hat, also das
Frischvollgewicht G, durch Füllung mit Wasser zu ermitteln, wird zwar beschrieben,
aber nicht empfohlen. Statt dessen läßt sich G durch Berechnung aus Achsenmaßen und
oben (unter 1.) genannten Faktoren sowie dem Schalengewicht g auf strenge Weise und
(mit G = 0,5425 - AB? + 0,50 g) genügend genau auf einfache Weise errechnen. Das
wechselnde Mengenverhältnis von Dotter und Eiklar kann dabei vernachlässigt werden.
— Die Variation innerhalb der Vogelarten ist zum Teil erheblich, +9—26%, richtige
Mittelbildung wichtig. Die Ursachen der Variation (Außentemperatur beim Haushuhn,
Nahrung) sind weitgehend unbekannt. Das absolute Frischvollgewicht G schwankt
zwischen 0,24 und 12700 g. Es kommen größere Durchschnittsgewichte bei kleineren
Verwandten vor, wobei das Kiwi-(Apteryx-) Ei hervorzuheben ist. Gleichschwere Vögel
verschiedener Taxa legen oft verschieden schwere Eier.
Bei der Berechnung des Eigewichts hat das Schalengewicht g, das von den meisten
Forschern aus abzulehnenden Gründen vernachlässigt wird, eine große Bedeutung. Es
muß daher besonderer Wert auf das Wiegen leerer Eischalen gelegt werden, das sich auch
bei der Kritik von Eigewichtsangaben im Schrifttum als nützlich erweist. Im all-
gemeinen haben größere Eier absolut und relativ schwerere Schalen, die 0,014—3346 g
wiegen können, aber das Verhältnis zwischen Schalen- und Eigewicht, also das Relative
Schalengewicht Rg, das 4—29%, betragen kann, schwankt innerhalb der Art fast nur
um etwa 1%. Innerhalb der Gattungen und höheren Taxa sind die Schwankungen
erheblich, besonders bei der Gattung Francolinus. Das Relative Schalengewicht ist bei
vielen, aber nicht allen Brutparasiten, bei relativ viel weniger Offenbrütern und bei
vielen Nestflüchtern größer als bei etwa gleichschweren Eiern selbstbrütender Ver-
wandter der Brutparasiten bzw. von Verdecktbrütern bzw. Nesthockern.
Die Eigröße ist nicht einheitlich mit der Anzahl der Eier im Gelege koordiniert. Sie
wächst mit dem Alter der Haushühner, nimmt aber in Nachgelegen nicht immer ab.
Daß die Eigröße variabler ist als die Eidimensionen, ist leicht zu erklären. -
Das Durchschnittsgewicht des Eies steigt in derselben systematischen Einheit im
allgemeinen langsamer als das Durchschnittsgewicht der dazu gehörigen Weibchen zur
Durchschnitts-Eigewicht )
Durchschnitts-Weibcehengewicht
beträgt im Durchschnitt von etwa 2000 Vogeliormen 10,6%, und schwankt zwischen
1,3 und 27,5%. Es ist bei kleineren Vogelarten größer als bei großen, aber die inner-
halb der systematischen Gruppen dafür gezeichneten Kurven liegen auf ganz ver-
schiedenem Niveau und steigen meist bei den kleinsten Vögeln jeder Einheit besonders
stark an. Eine neue Übersicht über etwa 125 Familien wird mit Angaben über Nest-
flüchtertum, Verdecktbrüten und Gelegegrößen verbunden. Ökologisch und physio-
logisch wichtig erscheint, daß Nestflüchter, unter denen sich besonders viele spitz-
flüglige Vögel mit langem Unterarmskelett befinden (s. Abschnitt 3.1. X.), sowie
Fortpflanzungszeit. Das Relative Eigewicht (rs —
A
Berechnungen für Zwecke der Oologie 133
Offenbrüter im Durchschnitt relativ schwerere Eier als Nesthocker und Verdecktbrüter
legen. Die Gründe, die HEINROTH, HuxL£Ey und andere für die Schwankung des Rela-
tiven Eigewichts anführen, werden ergänzt, aber bei der komplexen Natur dieser
Frage nicht für ausreichend gehalten.
Die Eigrößen, besonders aber die Schalengewichte, nehmen bei domestizierten und in
menschlicher Obhut gehaltenen Vögeln auffällig ab, was lange vor den Veränderungen
dieser Größen durch Einwirkung von Nahrungsgiften festgestellt wurde. Diese erst seit
kurzem aufgetretenen und erforschten Umweltschäden werden nicht behandelt (s.
Zusätze S. 145).
4. Die Schalendicke wechselt an verschiedenen Stellen desselben Eies. Ihr Durch-
schnitt für das normale Einzelei liegt zwischen 0,04 (abnorm 0,025) und 2,5 mm; sie
erreicht aber bei ausgestorbenen Riesenvögeln 5,85 mm. Ihr Wert (d=m- &) wird
aus dem Schalengewicht und den beiden Eiachsen errechnet, wobei der Dickenfaktor m
wichtig ist. Wegen m = 1 sei auf Abschnitt 4. b. verwiesen. Die (durchschnittliche)
Schalendicke schwankt auch im Gelege, innerhalb der Art und der Familie. Ihre Be-
ziehungen zum Eigewicht, zur Eibreite und zum Vogelgewicht sind nicht korreliert und
noch ganz ungeklärt. Bei Zwerg- und Rieseneiern findet sich eine überraschende Tendenz
zur Beibehaltung der für die Art normalen Schalendicke, woraus sich für etwa 90% der
Zwergeier ein höheres, für etwa 70%, der untersuchten Rieseneier ein niedrigeres Rela-
tives Schalengewicht ergibt. Dies dürfte für die Stammesgeschichte verschiedener Vogel-
arten wichtig sein, zum Beispiel für die relative Dickschaligkeit der Apteryx-Eier.
A ' AB
5. Die Reyschen Quotienten q - —) und @ (- = werden bisher fast nur bei
8
der Beurteilung der richtigen oder falschen Bestimmung von Eiern der Art Ouculus
canorus verwendet, wobei q sich besonders wegen des starken Kontrastes zwischen den
Werten für Parasiten und Wirte bewährt hat. q schwankt im übrigen zwischen 0,125
bei Aepyornes und 5,00 bei einem Kolibri; es ist umgekehrt proportional der Schalen-
dicke d. q wird in Tabellen mit d, G und Rg verglichen.
6. Für die Berechnung der Eioberfläche ist neben der Formel OÖ = B?Kc (Werte für
K und c in Tabellen 14 bzw. 15) eine vereinfachte, aber viel ungenauere zu verwenden.
7. Die Bedeutung des großen Eiumfangs (U) ist von SZIELASKO überschätzt worden.
Man kann ihn wie auch den kleinen Eiumfang (u) aus den Achsen mittels der Kappa-
Tr 1 /k— 1)? } =
(x-) Methode berechnen, so U=(A- B)- 5% wobei x — ze F ) . Die. Werte
für x und — x werden in Tabellen (18 und 19) angegeben. |
En
8. Das spezifische Gewicht der Eischale, das einschließlich Schalenhaut im Durch-
schnitt y — 2,05 beträgt, läßt sich aus großen, aber auch aus vielen kleinen Scherben
auf verschiedene Weise, nicht nur ‚„naß‘‘, sondern auch ‚trocken‘ berechnen. Die Härte
der Kalkschale kommt der des Stahls und des Glases nahe und ist anscheinend bei allen
Eischalen etwa gleich.
9. Das spezifische Gewicht IT’ des ganzen Eies wird mit Hilfe einer umständlichen
Gewicht 0,54» (A — 2d)(B—- 2d)’—g
Volumen 0,523AB’9
und Reduktionsfaktor » oder angenähert mit T’ = 1,02 + 0,0072 Rg aus dem Relativen
Schalengewicht berechnet. Bebrütung und Verdunstung vermindern das spez. Gew.
des Frischeies. Die tägliche prozentuale Gewichtsabnahme AG, mit 0,4—2,06%, des
Formel T — aus Eiachsen, Schalengewicht
140 Mathematischer Teil
Gewichts ermittelt, läßt sich mit Eigröße und Schalendicke bisher nicht in Beziehung
bringen. Sie summiert sich im Laufe der Bebrütung auf etwa 12—33%, des Frischvoll-
gewichts. Sicher hängt ihre Größe mit der Witterung zusammen, wie GREENLEES Formel
für den Gewichtsverlust der Haushuhneier beweist. Das spezifische Gewicht erlaubt die
Feststellung, in welcher Reihenfolge die Eier eines Geleges abgelegt worden sind. Das
Aufsteigen des Eies im Wasser erfolgt bei höherem Relativen Schalengewicht Rg später
als gewöhnlich. Für HEISROTES nicht schwimmende Pterocles-Eier wird eine Erklärung
versucht.
10. Die Einteilung der Eigestalten in ‚normale‘ und ‚abnorme‘, wie sie SZIELASKO
mit mathematischen Mitteln (Eikurven) vorgenommen hat, wird abgelehnt, da 37%
„abnorme‘“ unter 1368 beschriebenen Eigestalten ein allzu hoher Satz sind und überdies
alles, was nicht zu den 24 Formeln SZIELASKoS paßt, als ‚‚monströs‘“ bezeichnet wird,
genannt sei allein das Tordalken-(Alca-) Ei. Die im Prinzip mathematisch bestimmbare
und von SZIELASKO unanschaulich mit 4 bzw. 7 Zahlen beschriebene Eigestalt kann
nach solchen Formeln berechnet und gezeichnet werden, und die Zeichnung eines
Längsschnittes nach den Formentafeln SZIELASKOS wird ausführlich besch Es
handelt sich um die Eikurve des Königspinguins, Aptenodytes patagenica.
A
11. Wenn man aber die Durchschnittswerte für k (-5 und e <= aller von
SCHÖNWETTER erfaßten über 9000 Vogelformen zur Konstruktion einer theoretischen
Eikurve benutzt, kann man das danach gezeichnete Ei als ‚‚Normalei‘‘ der Vögel
betrachten und für die vielleicht urtümlichste Eigestalt der Vögel halten. Es ist ähnlich,
aber etwas länglicher als ein Bussard- (Buteo-) Ei.
12. Bei den Berechnungen für Zwecke der Oologie ist der Verfasser auf einige merk-
würdige Möglichkeiten zur Vereinfachung einzelner Formeln gestoßen, die aber nicht
weiter ausgewertet werden.
Einige Ergänzungen aus neuer Literatur
Zu Abschnitt 1.91. Die Eigestalten (s. 1.g.S.20) sind auch auf ganz andere Weise
als mittels Cartesischer Koordinaten mit Hilfe parametrischer Gleichungen mathe-
matisch erfaßt worden: PREsTon (1953) benutzt für die immer komplexer werdenden
Eigestalten hin bis zum Alkenoval Gleichungen, die zur Schätzung der verschiedenen
Parameter -für Asymmetrie (ovateness, Ovalgestalt), Zweispitz (Bicone) und Alken-
gestalt (c,, c;, cz) die Methode der ‚Kleinsten Quadrate‘ vorschreiben. Auf jeder Seite
des Eiäquators, der ja meist nicht die breiteste Stelle des Eies umfaßt, wird das Ei an
drei Stellen senkrecht über der Längsachse durchschnitten gedacht und der jeweilige
Durchmesser der Teilungsfläche mit Hilfe der Formeln errechnet, wobei sich ergibt,
daß die errechneten Werte für etwa 25 Vogelarten gut mit den gemessenen überein-
stimmen. — Für das von PALMER (1962, S. 14) herausgegebene Handbook of American
birds hat Preston (1968) als Eimaße außer A (bei ihm L) und B die Radii der Ei-
krümmung am stumpfen (R,) und am spitzen Pol (R,) veröffentlicht bzw. vorgesehen,
ferner die Standardabweichung dieser 4 Maße, k — 5 (Formel (3)), c, als Wert für die
Asymmetrie und c, für die Bicone (Zweispitzform), die letzten beiden nach den ver-
einfachten Formeln
= (Rg — Rp)-A:B? (dort steht statt A: L) (103)
A
€ = (Rz + Rp) ee 1 (104)
nn m
Berechnungen für Zwecke der Oologie 141
Beide Formeln ergeben die doppelten Werte der umständlicheren ‚idealen Formeln“,
C; ist dabei zu vernachlässigen.
Durch mathematische Teilung des Eies in einen elliptischen und einen Parabel-Teil
wurde beim Weißen Leghorn eine bessere Übereinstimmung der errechneten mit den
gemessenen Werten festgestellt, als wenn man das Eiprofil nur als Ellipse auffaßt
[REHKUGLER 1973, dort weitere Gestaltsgleichungen auch früherer Erforscher der
Gestalt des Haushuhneies (Gallus gallus domesticus)].
Das letzte Ei in 20 Gelegen von Larus atricilla war signifikant schlanker (und damit
leichter) und hatte einen kleineren Krümmungsradius R, sowie eine kleinere Konstante
für die Ovalgestalt (c,) als vorher abgelegte Eier (2 oder 1) (PRESTON & PrEstox 1953).
Solche Verschiedenheiten in der Gestalt wurden bei Falco vespertinus, Calandrella
cineres hungarica, Lanius minor und Locustella fluviatilis in Ungarn, deren Eier innerhalb
jedes Geleges regulär an Größe zunahmen, nicht bekannt. Natürlich können aus den
Legenden zu Farbtafeln (Teil A) und Tab. 9 (S. 89) viele Daten über die Variation von
k (sowie G und Rg;) innerhalb der einzelnen Gelege abgelesen werden (EnDzsu. a. 1967).
Zur Funktion der Eigestalt im Nest- und Brutfleckraum mit Figuren und Formeln
vergleiche die Nachträge “Bd.I zu S. 375° in Bd. IV.
Zu Abschnitt 1.g.1II. Gestaltsfaktor k bei nahe Verwandten: Ein Ergebnis, das
von HAARTMAN kürzlich (1971) vorgelegt hat. Nach ihm wächst k bei nahen verwandten
Arten mit Zunahme des Eigewichts, mit anderen Worten, schwerere Eier sind relativ
schlanker, was für Gelege zwar aus SCHÖNWETTERS Tab. 2 u. S. 88, Absatz 1, hervorgeht,
aber für systematische Gruppen schon nach dem S. 12 erwähnten Cecropis-Fall weitere
Untersuchungen verlangt.
Bei Halcyon ist k für 10 Arten (das sind 19 Formen), deren Frischvollgewicht des
Eies im Durchschnitt 5,7—8,5 8 (D,, = 7,0 g) beträgt, 1,11— 1,25, D,, = 1,16; dagegen
wiegen die Eier der restlichen 32 Formen dieses Handbuchs 8,4—14,5 g, D, = 9,9 g,
ihr Achsenverhältnis k schwankt in etwa dem gleichen Rahmen wie bei der vorher-
gehenden kleineierigen (und kleineren) Formengruppe von 1,10— 1,27, einmal 1,33, und
beträgt auch im Durchschnitt nicht mehr: k = 1,16 gegen 1,16. Ihr höchster Wert
(k = 1,33) kommt einer Inselrasse von H. chloris mit ganz leichten Eiern zu. Die vier
schwersten Durchschnittsgewichte der Gattung (H. coromanda, H. püeata, H. chloris
subsp. sowie H. concreta) ergeben D, — 12,7 g, aber auch kein höheres k: 1,13— 1,20,
D, = 1,17, für H. coromanda als größte Art nur 1,13. So läßt sich hier v. HaARTMANS
These nicht bestätigen (siehe S. 23).
Zu Abschnitt 2. Weitere Formeln für das Hivolumen:
1. WorTE (1940, S.44, 54) fand, daß Gallus gallus domesticus-Eier 15%, weniger
Raum umfassen als ein Ellipsoid gleicher Länge und Breite.
V— 0,852 AB2 (bei ihm steht statt AB: ab) (105)
wo| A
2. Hoyr (1979, S. 76) schätzt einen Fehler von +2% für seine Formel
V = 0,51AB? (bei ihm steht statt A: L). (106)
0,51 ist ein auf mehrfache Weise gewonnener Koeffizient; aber außer den bei seiner
Berechnung benutzten 124 Eiern gab es 4 sehr asymmetrische, für die 0,51 gar nicht
paßte. Andererseits finden sich ähnlich große Koeffizienten bei WESTERSKOY (1950) für
Phasianus colchicus und bei STONEHoUSE (1963, S.474) für 10 Seevogelarten mit
2000 Eiern sowie 1966 für C'ygnus atratus, bei uns Chenopis atrata. STONEHOUSES
V = 0,512AB? (bei ihm statt AB: ld) (107)
142 Mathematischer Teil
ergibt bis 44%, im Durchschnitt +2%, Fehler. Beide Formeln ähneln der von ScHÖöN-
WETTER (Formel 16, S. 27).
3. PAGANELLI, OLszowkA & Ar (1974, S. 319) schreiben
n AA
v=,V:— 3 > i-? +yr + (yı-2 -y1)]- Ax (108)
Far! 37
(wobei y den Abstand von dem über der x-Achse eingezeichneten halben Eilängsschnitt
bis zur x-Achse, x aber Abschnitte der x-Achse bedeuten).
4. Preston (1974, S. 135) hat nach seinen parametrischen Gestaltsgleichungen
(oben S. 140) auch eine entsprechende für das Volumen aufgestellt, die von TATuM
(1975) etwas abgeändert und vereinfacht wurde, aber die Größen ce, und c, von PRESTON
behält: i
al2
4 ma?b [ - cos®#(1 4 2c, sind — 2c, sin?) - dO (109)
a/2
(wobei a der Radius am Äquator, also in der Mitte der Längsachse (!), b die halbe
Längsachse, ® (theta) den exzentrischen Winkel zwischen der Längsachse und einer
Geraden bedeutet, die entsteht, wenn man in zwei senkrechten Teilungskreisen den
Radius des äußeren von außen auf dem Durchmesser des inneren abträgt und den End-
punkt mit dem Zentrum des äußeren Kreises verbindet).
5. Für das Volumen des Eiinhalts gibt Couısox (1963, S. 213) nach Füllung der
Schale mit 30%, igem Alkohol die Formel
V; = 0,4866AB? (bei ihm statt AB: Id). (110)
Die direkte Ablesung des Volumens von Eiern mit mehr als 20 ml Volumen scheint nach
Lortixs & BowMAn (1978) durch Eintauchen in einen mit Wasser gefüllten Behälter
und Ablesen des Wasserstandes in 2 damit verbundenen kommunizierenden Röhren
vor und nach dem Eintauchen des Eies gut möglich zu sein. Über praktische Anwendung
bei kleineren Eiern ist mir bisher kein Bericht bekannt. Ein anderes Gefäß verwendet
Hoyr (1976, S. 344—345), s. auch Ergänzungen zu 9a. (S. 147).
Zu Abschnitt 3a. Die Wassermethode der Eigewichtsfesistellung besteht neuer-
dings im Ersatz des verlorenen Wassers durch Füllen der dasselbe Volumen aufweisen-
den (DRENT 1970, S. 91) Luftkammer mit Wasser bei sonst unverändertem Ei, was Hoyr
(1979, S. 76) als sichere Methode empfiehlt, obwohl der Embryo dabei geopfert wird.
Die Gewichte von 1164 nach Füllen der Luftkammer mit destilliertem Wasser
gewogenen Eiern von 68 Arten (97 Formen) wurden mit den in unseren Listen er-
rechneten Frischvollgewichten von 7616 Eiern derselben Arten und Unterarten ver-
glichen. Bei einer Standardabweichung von 4,6%, ergab sich eine nahezu identische
logarithmische Gewichtskurve für die beiden Gewichtsserien: Gscnöswerrer = 0,991
x GE 72 = 0,999, X = 1,046 (bei RAun statt Gscnönwerrer: W —S, statt Gum:
W -— E). Damit findet die Berechnungsmethode SCHÖNWETTERS zur Bestimmung
des Frischvollgewichts der Vogeleier eine erwünschte Bestätigung, die wir einer
sich über 10 Jahre erstreckenden Forscherarbeit von Nordamerikanern an vielen
Stellen der Erde verdanken (Rau, PAGANELLI & SOTHERLAND 1985)
Eine elektromagnetisch funktionierende Waage für kleinere Eier wurde erfolgreich
bei Feldarbeiten eingesetzt (NYHoLMm & GINSTRUP 1968).
Zu Abschnitt 3b. Hoyr (1979, S. 73) gibt die Gewichtsformel in der Form
G=k,-AB? (bei ihm statt A: L) (111)
Berechnungen für Zwecke der Oologie 143
und bestimmt den Korrelationskoeffizienten wie folgt:
= — (bei ihm statt A: L). (112)
Das Ergebnis (k, = 0,548 + 0,016) ist also ohne Rücksicht auf das Schalengewicht
gewonnen, stimmt aber trotzdem gut mit aus SCHÖNWETTERS Angaben errechneten
überein, obwohl SCHÖNWETTERS auf größerem Material beruhende Durchschnittswerte
für Eigewicht, Länge und Breite signifikant von denen der bei Hoyr (]. c.) untersuchten
(wohl weniger zufällig gesammelten) 26 Vogelarten abweichen.
Zu Abschnitt 3c. Variation der normalen Bigrößen und -gewichte innerhalb der Art.
Das für die einzelnen 2 von Parus m. major relativ konstante Eigewicht wurde in
Bd. III (S. 8) erwähnt. — Wenige Jahre später hat Jones (1973), wie OJANEN, ORELL
& VÄısÄnen (1979) berichten, erstmalig für eine freilebende Vogelart, Parus major
newtoni, große Erblichkeit der Anlage für Eigröße nachgewiesen. Dies wurde in der
zweiten genannten Arbeit (1979) für Parus m. major bestätigt.
[4
Zu Abschnitt 3g II. Trotz des relativ ähnlich bleibenden Relativen Schalengewichts
bei verschieden großen Eiern der Picidae, das dem Herausgeber auffällt, fügen sich
368 SCHÖNWETTER entnommene Rg-Größen fast alle in eine von der Regressions-
geraden einer voll logarithmischen Darstellung beiderseits nur um je zweimal den
Standardfehler des Schätzwertes abweichende Zone. Die allometrische Formel lautet hier
— 4,82 x 102G1.132 (113)
g
(PAGANELLI, OLSZOWKA & Ar 1974, S. 322, schreiben statt g: W,., statt G: W)
Aus der relativ etwa gleichgroßen Zunahme der außen stützenden Massen bei Süß-
wasserschnecken, Spinnen, ja sogar von inneren Stützmassen bei Säugern und Vögeln
ermitteln ANDERSON, RAHN & PrAngGe (1979, S. 140) die Regressionsformel
log mn, auch Eischale) — log A (Konstante) 4 b- log x (114)
(x = ganze Körpermasse, hier Frischvollgewicht)
In dieser Formel ist b = 1,12, was bedeutet, daß eine Stützmasse, also die Schale,
ungefähr 1,3ma! so schwer wird, wenn die zu stützende Masse, also das Ei, das Zehn-
fache an Gewicht erreicht.
Zu Abschnitt 3iIV. Das Relative Eigewicht haben RAHN, PAGANELLI & Ar (1975,
S. 750—760) analysiert. Sie konnten mit Hilfe der damals vorliegenden Daten für ins-
gesamt 809 Vogelformen in unserem Teil A (1960—1972, einschließlich HEINROTH
1922), mit Hilfe von Amapon (1943) für „Fringillidae‘, Mess (1964) für Greifvögel
Europas und Lack (1968, der selbst nach diesen Quellen S. 184—259 viele Kurven
brachte und vor allem für Sphenisciformes, Procellariifformes und Anseriformes neues
Material hinzufügte, S. 222—241) in logarithmischer Darstellung zahlreiche Regres-
sionsgeraden (‚Huxley-Kurven‘“) zeichnen (vgl. oben Fig.4, S.61) und als Formel
dafür anführen:
G=3-G3 (dort steht statt G: W,, statt Ge: B). (115)
Für den Exponenten b wurde die Größe 0,67 oder 2/3 (l.c., 8. 750 bzw. 764) er-
rechnet, die in den untersuchten Vogelordnungen bzw. (beiden Passeriformes) Familien
den gleichen Wert behielt, wogegen a variabel und für jede Gruppe charakteristisch ist:
Innerhalb von 9 Tribus der Anatidae schwankt das durchschnittliche RG bei 1000 g
Körpergewicht, vom Schnittpunkt der Geraden abgelesen, von 5%, bei den Cairinini
bis 10% bei den Oxyurini. Noch mehr schwankt RG bei 30 g schweren Vögeln aus
14 Familien der Passeriformes: Nur 8,7%, RG weisen hiernach (S. 758) die Hirundinidae
144 Mathematischer Teil
und das höchste mit 20%, Fringillidae (heute meist Emberizidae) auf. Dieser Befund
weicht sehr von dem in unserem Teil A ab: Wir kommen auf 10,2 bzw. 10,0%, bei
Hirundinidae bzw. Fringillidae, auf 12,5% bei den Emberizidae, das ist der Durchschnitt
für 11 Schwalben mit i. D. 21,2 g Körpergewicht, 73 Finkenvögel mit i. D. 25,5 sowie
für 83 Emberizidae mit i.D. 24,9g Körpergewicht (Bd. II, S. 188, 1969; Bd. III,
S. 167, 1981 bzw. MS). Irgendetwas stimmt bei der ‚„Fringillidae‘“-Linie der Autoren
nicht; denn auch bei 30 g ?-Gewicht kommt unsere Liste nur auf RG-Werte von 9 bis
12%. Ähnlich war der Fehler bei einer Anwendung der Methode Amapoxs in den
letzten Jahren. Sie benutzte wie Amapon gar nicht das Eigewicht, sondern die gleich
zu erwähnende ‚Eizahl‘ (egg value, AB?), errechnete also gar kein Relatives Eigewicht
(RG): GRANT (1982) wurde deswegen bezüglich Geospiza und Verwandten von SCOTT
& AnknEy (1983) und von sich selbst (1983) berichtigt.
Weitere Formeln zum Relativen Eigewicht lauten:
G =k-. 6073 (115a)
und für 127 HEINROTH-Werte (1922)
log „G = 0,79 log „Go + 2,34 (dort 1981 ‚„W“ statt G, „P“ statt Go) (115b)
MARTIN & May, Nature 293, S. 59, 1981).
Mehrfach wurde in Teil A ein Ei für falsch bestimmt gehalten, weil es zu klein oder zu
groß für das Weibchengewicht wäre. Umgekehrt hat Amapon aus den Eigewichten (bei
ihm waren es allerdings die „Eizahlen‘‘ AB?) auf die dazu gehörigen Q-Gewichte ge-
schlossen; was nur bei engster Verwandtschaft in einem kleinen Größenbereich der
Eier möglich ist. Gute Übereinstimmung bei 14 (wohl fast immer) Emberizidenformen
wurde mit Hilfe der Formel
Go = 3,114 ..(AB2)%26 (116)
gefunden (AMmADoN 1943, S. 228— 230).
Zu Abschnitt 31IX. Zur Abhängigkeit der Relativen Eigröße von Umweltfaktoren
hat sich ausführlich Lack (1968, S. 306 und anderswo) geäußert. Für ihn ist vor allem
anderen die Menge der dem legenden 2 und den Jungen vor dem Selbständigwerden zur
Verfügung stehende Nahrung wichtig, was in dieser allgemeinen Fassung umstritten ist.
Wo relativ große Eier gelegt werden, sind die Jungen beim Schlüpfen relativ weiter
entwickelt, brauchen also bis zum Flüggewerden weniger Nahrung. Lack hält auch die
Einwirkung von Räubern auf Eier, Junge und Eltern für einen Faktor, sei ergänzend
hinzugefügt. Vor starker Nesträuberei schützen nach ihm kleinere RG, die zum Teil
größere Eizahlen im Gelege ermöglichen, aber überraschenderweise schützen auch
größere RG, die nestflüchtenden Jungen mehr Nahrungsvorräte (Rest des Dotters) beim
Schlüpfen mitgeben und damit jungen Wasservögeln weitere Wege zum nährenden
Gewässer ermöglichen.
Zu Abschnitt 3k. Das Relative Gelegegewicht wächst, wenn man die vor allem bei
Lack (1968, S. 199— 213, 222—234, 367) gesammelten Daten mathematisch faßt, wie
das RAHn, PAGANELLI & Ar (1975, S. 760—763) getan haben, bei Anatidae und Pha-
sianidae proportional etwa mit der Quadratwurzel aus dem Körpergewicht, was man
schreiben könnte:
Geslege — & VG (a bei Anatidae 13,6, bei Phasianidae 6,0). (116a)
Bei 8 Arten der „Fringillidae‘‘ (fast nur oder nur heutige Emberizidae) errechnen die
Autoren nach den Zahlen von Amapon (1943) ein im Vogelreich nach ihrer Meinung
Berechnungen für Zwecke der Oologie 145
vielleicht maximales Gelegegewicht von 95—105% des Weibchengewichts, bei SCHÖN-
WETTER (oben S. 76) geht es weiter, aber auch nur bis 125%.
Neuerdings ist übrigens unter dem Einfluß von Pestiziden eine Abnahme der Lege-
leistung (aber nicht immer) festgestellt worden (Quellen bei PRINZINGER 1980, S. 21
bis 24).
Man muß vielleicht zu diesen vielen mathematischen Fassungen sagen, was SCHÖöN-
WETTER immer wieder bei anderen allgemeinen Behauptungen gesagt hat: Es ist keine
allgemeine Gültigkeit dieser Formeln zu erkennen und die Ausnahmen oder Abwei-
chungen, die sich schon gefunden haben und die noch zu finden sein werden, dürften
den Ornithologen weiterhin viel Kopfzerbrechen machen, aber auch schöne Aufgaben
stellen.
Zu Abschnitt 4. Über Schalendicke siehe auch unten unter 8a (8. 147).
Zu Abschnitt 4f. Korrelation zwischen Schalendicke und anderen oologischen Schalen-
werten. Eine hoch signifikante Korrelation zwischen der Schalendicke d oder noch
mehr ihrem Quadrat d? und der an bestimmten Schalenstücken gemessenen (inter-
essanten und biologisch wichtigen) Bruchfestigkeit (Belastung beim Bruch, in g aus-
gedrückt) besteht innerhalb der einzelnen (aller?) Vogelgruppen (Tyrer 1969); sie
ist aber besser im allgemeinen Teil eines Handbuchs der Oologie zu behandeln. —
Ebenso die interessante Erscheinung, daß die auf 1cm? der inneren Schalenfläche
entfallende Zahl der Mammillenköpfe (s. Bd.I, Taf.3, Fig.5, S. 24 für Rhea) um-
gekehrt proportional der Schalendicke erscheint, was statistisch wohl nicht ganz
gesichert ist: Von 14 untersuchten Arten erwähne ich zwei: Bei Rhea americana mit
0,947 mm Schalendicke wurden auf der genannten Einheitsfläche i. D. 7100 Mammillen-
köpfe, davon 4900 (aus meist 2 Köpfen) verschmolzene, gezählt, wogegen bei Sturnus
vulgaris mit 0,120 mm Schalendicke die entsprechenden Zahlen 54400 bzw. 34400
waren (TYLER & FowLer 1978, S.4 u. 11).
Zu Abschnitt 4g. Umweltschäden führen auch zu Schalenverdünnungen. Leider
wurde neuerdings bei wildlebenden Vögeln Verdünnung der Schalendicke festgestellt,
so wohl zuerst von RATCLIFFE (1967) und Hıck£Y & ANDERSoN (1968) bei Eiern von
Greifvögeln und Fischfressern in England und Nordamerika. Eine große Fülle kaum
noch überschaubarer Arbeiten ist seitdem über dieses Thema erschienen. Durch An-
reicherung von Giften aus vergifteten Beutetieren leiden sich animalisch ernährende
Vögel besonders. Nicht nur werden ihre Eischalen oft dünner und brüchiger; auch die
Embryonen leiden und sind vielfach nicht entwicklungsfähig; sie erliegen denselben
Giften, vor allem dem DDE aus dem Insekten-Vertilgungsmittel DDT (ConkAD 1978,
S. 87—88), aber auch Hexachlorbenzol und polychlorierten Biphenylen. — Ein Über-
blick über das Problem und die Forschungsergebnisse erschien bereits 1973 (CookE
1973), ein neuester 1980 (PRINZINGER 1980, S. 24—46). Wir müssen uns mit einem
Hinweis auf Befunde aus der nördlichen Welt, aus Mexico und von den Falkland-
Inseln begnügen.
ÖÜHLENDORF, KLAAS & KaıszR (1978) untersuchten 243 Gelege des Nychicorax nyeti-
corax vor allem aus dem östlichen Küstenbereich der USA und fanden den höchsten
Gehalt an DDE in Eiern von Long Island, New York (7,0 ppm vom Naßgewicht).
Gegenüber vor 1947 gesammelten Eiern hatten die neueren in den nordöstlichen Staaten
signifikant um 7,1— 12,3%, dünnere Schalen, aber + signifikant Verdünnungen auch in
den südlicher und westlicher gelegenen Gebieten. Hier war ebenfalls der DDE-Gehalt
als Einzelgift am besten, aber der Gesamtgehalt an Organochloriden noch mehr mit der
Verdünnung korreliert. Ähnliche Dünnschaligkeit bei 3 weiteren Arten wiesen dieselben
Autoren später (1979, S. 183— 19, 89—94) nach.
Für die Bundesrepublik Deutschland lagen nach ConkAp (1978, S. 83—90, ausführ-
10 Oologie, 43. Lieferung
146 Mathematischer Teil
licher behandelt und mit Auslandsbefunden verglichen 1977, S.8—63) aus dem Tier-
hygienischen Institut Freiburg Untersuchungen an 976 Vogeleiern von 62 Arten aus den
70er Jahren vor, die zu 93% Schadstoffe in für menschliche Ernährung ‚‚unzulässiger
Höhe‘ enthielten, und deren Schalen bei Accipiter nisus, Circus aeruginosus, Falco
peregrinus, Accipiter gentilis, Circus pygargus, Tyto alba und Strix aluco in absteigender
Folge statistisch hoch abgesichert 12,5—4,3%, dünner waren als bei Eiern aus früherer
Zeit. Bei Accipiter nisus von Großbritannien war ebenfalls der Grad der Schalenverdün-
nung am besten mit der Zunahme von DDE im Ei korreliert (NEwTon & BoGan 1978).
Kırr & PEAKALL (1981) stellten einen im Durchschnitt 18 bzw. 25,4%, kleineren
Schalengewicht in mg
Index der Eischalendicke = Lande X Breite des Kies
(117)
(was ein geringeres Rg bedeutet) bei Falco rufigularis und F. femoralis in Mexico fest,
aber erst seit 1954 bzw. 1957; bei F. femoralis hatten 7 Scherben von 1977 nur i.D.
0,212 mm Schalendicke, also 24%, weniger als die bis 1928, vor der DDT-Zeit, ge-
sammelten 20 Schalen mit d = 0,279 mm. Die Verdünnung in diesem Entwicklungsland
kommt der größten bekannten Dickenabnahme des F. peregrinus in Industrieländern
gleich. Auch wurde ein um 20,4%, gesunkener Index der Eischalendicke kürzlich
bei Falco peregrinus macropus in Victoria, also in Australien, festgestellt, wo Sturnus
vulgaris und Columba palumbus die Hauptbeute sind (PRUETT-JONESs, WHITE & EmIson
1981).
Auf den Falklandinseln war der Befall je nach der Vogelart bis über 400% niedriger
als im Nordwesten der BRD (HoERSCHELMANN, POLZHOFER, FIGGE & BALLSCHNEIDER
1979, S. 264—266) — aber wie lange noch?
Für Columba p. palumbus geben MURTON, WESTWOoD & IsaAcson (1974, S. 58) den
Wert der Schalenverdünnung mit 20% an, obwohl die tatsächlichen Wägungen an 10
Gelegen (Fig. 1, S.53) etwa 15%, als richtiger erscheinen lassen. Andere Definition
wie oben bei PRUETT-JonEs u.a. [Nebenbei bemerkt, ergibt sich dort mit 10,6% ein
großes Relatives Schalengewicht (g,; = 1,89 + 0,26g) gegenüber 7,1%, in unserem
Bd. I, S. 492]. Hat man feuchte Schalen gewogen?
Zu Abschnitt 6b. Oberfläche. PAGANELLI, OLSZOWKA & Ar (1974, S. 319) haben für
das in viele Streifen senkrecht zur Längsachse zerschnitten gedachte Ei, also mit Berück-
sichtigung der Eigestalt, die Formel
n n
02,0 =rd%Wi-ı + yı) (Ai? + Ayı?)V> (118)
i=1 i-1
aufgestellt (bei ihnen steht statt O: A), wobei n seitliche Kegeloberflächen über n Kegel-
stümpfen addiert werden, in die der beim Drehen um die x-Achse entstehende, vom
Eilängsschnitt begrenzte Eikörper zu teilen ist, y den jeweiligen Abstand der Eikurve
von der x-Achse und x die Teilstücke auf der x-Achse bedeuten. Die Regressionsgerade
bei logarithmischer Auftragung der Gewichtswerte auf die Abszisse und der Ober-
flächenwerte auf die Ordinate folgt der Formel
O = 4,835G%#6#? (dort steht statt dessen A = 4,835 W%6#2) (119)
(O in cm?, G in g) (ebenda, S. 321).
Die Regressionsformel der Oberfläche in cm? gegen das Volumen in cm? beträgt nach
der voll logarithmisch gezeichneten Regressionsgeraden
O = 4,951 V%66 (dort steht statt O: A), (120)
was genau mit SHOTT & Preston (1975, S. 104) übereinstimmt. Diese Autoren er-
Berechnungen für Zwecke der Oologie 147
rechneten bei einem Ei von Stellula calliope wohl den Maximalfehler dieser Formel,
nämlich eine etwa 3% größere Oberfläche, wogegen nach TArum (1977) ein Fehler bis
6%, möglich wäre, aber nur für ungewöhnlich geformte Eier. Der Fehler wird nach
Hoyr (1976, S. 347) geringer, wenn man die von ihm abgeleitete Formel
A
0 (4303 + 0,394 5) v2 (121)
benutzt; er bleibt dann anscheinend unter 2%.
Zu Abschnitt 8a. Das spez. Gew. der Eischale beträgt nach PAGANELLI, OLSZEWKA
& Ar (1974, S. 323), ausgehend von
d = 5,126 x 10-°G%#6 (dort steht für d: L, für G: W), (122)
kombiniert mit O und G:
y = 1,945G%%* (dort statt y: p,, statt G: W), (123)
woraus sich auch nur eine sehr geringe Zunahme des spez. Gew. bei Zunahme des Ei-
gewichts ergibt.
Zu Abschnitt 9a. Spezifisches Gewicht des Eies. Nach PAGANELLI, OLSZOWKA & AR
(1974, S. 322) errechnet sich
ZZ - (dort steht p. = 7) — 1,0386: (dort statt G: W). (124)
Danach ist das größere I' bei schwereren Eiern auf die relativ schwerere Schale zurück-
zuführen.
Als einziges Beispiel für die Tauchmethode zur V-Bestimmung und für weitere regel-
mäßige Wägungen während der Brutzeit bei 129 bzw. 175 Eiern von Anous stolidus bzw.
Sierna fuscata sei (nach Hinweis auf Barrus klassische Arbeiten an ZLarus, unten
8. 148) BRown (1976) zitiert: Auf 1,07 maximal und 0,86 minimal schätze ich das spez.
Gew. nach den gezeichneten Kurven, und die Abnahme wurde durch 15 bzw. 16%
Gewichtsverlust vom Anfangsgewicht 36,3 bzw. 34,2g in 36 bzw. 28,6 Tagen Be-
brütungsdauer bewirkt.
Zu Abschnitt 9c. Einfluß von Verdunstung und Bebrütung auf G und I. Auf BArTas
bahnbrechende Feldarbeit kommen wir im nächsten Abschnitt. Den Wasserverlust
von 46 Arten stellte DREnT (1970, S. 91—92) zusammen. Er fand für den prozentualen
Gewichtsverlust (und der beruht fast nur auf Austritt von Wasserdampf) die Formel
AGrotaı; — G? (125)
RAHN & Ar (1974, S. 149) ändern diese Formel um:
0,0156"? — 126%?
G1-00
Das Ergebnis kommt nach diesen Autoren dem von GROEBBELS für 17 Arten er-
rechneten Wert von 0,16, aber auch unseren Werten (S. 126— 127) sehr nahe; in einer
späteren Arbeit (AR& RAnun 1980, S. 337) sinkt es mit Arotaı = 0,150 + 0,025 Standard-
abweichung sogar unter diesen Wert herab (nach 45 Eiern sowohl von etwas mehr
Wasser verlierenden Nesthockern als auch von weniger verlierenden Nestflüchtern).
15%, Gesamt-Gewichtsverlust wird auch in einem anschaulichen logarithmischen
Regressionsdiagramm für kleine bis große Vögel vorgeführt (RAHn, Ar & PAGANELLI
1979, S. 55). Über Voraussage des Schlüpfdatums aus dem Gewicht s. O’Marızy u.a.
1980.
Die tägliche Strömung durch die Kalkschale erfaßt eine Diffusionsformel von AR,
PAGANELLI, REEVES, GREENE & RAnHn (1974, S. 154):
Dyu,o = 0,432 — G%"’8 (dort steht statt D: G, statt G: W). (127)
AGyotaı = — 0,18 (bei ihnen steht statt G: W) (126)
HU
148 Mathematischer Teil
Beobachtungen in freier Natur (nicht im Brutapparat) ergaben nach DRENT (1975,
S. 350—352) in guter Übereinstimmung damit einen Exponenten von 0,740.
Aber diese Diffusion führt anscheinend bei einem’ Teil der Passeriformes nicht zu
täglich gleichgroßen Gewichtsabnahmen, entgegen z. B. den Angaben von GROEBBELS
(1937, S. 355) für Erithacus rubecula. CAREY (1979, S. 183—184) und SOTHERLAND,
PACKARD, TAIGEN & BROADMAN (1980, S. 181) fanden ansteigenden Wasserverlust in
den ersten 4 Tagen der Bebrütung und dann etwa gleichbleibende Werte bei Turdus
migratorius und Agelaius phoeniceus bzw. Petrochelidon pyrrhonota.
Für den Transport von Wasserdampf und Kohlensäure aus dem Eiinneren in die
Außenwelt und für den Transport von Sauerstoff auf dem umgekehrten Wege stehen die
Poren der Eischale zur Verfügung, deren Gesamtareal auf der Schale, die Porenfläche
der Schale, sich für die Höhe des Meeresspiegels nach der Formel (RAHs, CAREY,
BALMAS, BHATIA & PAGANELLI 1977, S. 3097) errechnet:
O> = 0,447Dp,o : d (dort steht statt O: A, statt D: G, statt d: L) (125)
(wobei Dy,o die Diffusionskapazität der Schale für Wasserdampf bedeutet).
Sehr interessant sind wohl zwei wichtige Daten: Je länger die Brutzeit, um so geringer
der tägliche Wasserverlust, das heißt um so dicker die Schale und (oder) um so kleiner
die Porenfläche, wohl bewirkt durch Abnahme der Porenzahl! — Je dünner die Luft
in der Umgebung des bebrüteten Eies, um so kleiner die Porenfläche der Schale, weil
dann die Diffusionskapazität größer wird, die Schalendicke d aber (immer?) gleich bleibt.
Für Gallus gallus domesticus in Indien und für Agelaius phoeniceus in Nordamerika
wurde dieser Höheneffekt nachgewiesen (RAHN, CAREY & andere 1977, S. 3096— 3098).
Nach der Untersuchung an 90 Arten wurden als Porenflächen der Schalen zwischen
0,07 mm? bei Nectarinia osea und 168 mm? bei Struthio camelus festgestellt (AR & Rau
1978, S. 229— 232) oder, wohl besser gesagt, geschätzt.
Wenn durch eine Zählung der Poren an verschiedenen Stellen der Schale deren
Gesamtzahl (7000—7500 bei Gallus gallus domesticus) ermittelt ist (weitere Poren-
zählungen bei 21 Anatidenarten zwischen 5127 bei Mergus merganser und 18752 bei
Anser cygnoides, bei uns Cygnopsis, seien aus der Arbeit von HoyT, BoArD, RAHN
& PAGAnELLI 1979, S. 446, erwähnt), kann man den Porenradius mit der Formel
= | — (dort steht statt O: A) (126)
errechnen..Das ergibt bei Gallus gallus domesticus etwa 10 um (= 0,01 mm), was mit
dem von TyLeEr (1945) elektronenmikroskopisch gemessenen Daten (s. auch 1964,
S.59) annähernd übereinstimmt. Grob gesagt, sorgt demnach jede einzelne Pore
auf der 68 cm? großen Gallus-Schale bei gleichmäßiger Porenverteilung für den Gas-
austausch in einem Schalenbereich von 1,1mm Durchmesser (PAGAnELLı 1980,
S. 330 und 333).
Zu Abschnitt 9d. Wann schwimmt ein Ei auf dem Wasser? BARTH (1953, S. 154 bis
155) fand, daß in freier Natur 41 Eier von Larus canus 8—13 Tage nach der Ablage
bzw. dem Bebrütungsbeginn im Wasser hochstiegen, besser gesagt, schwebten. Sie
wogen dann 4 + 0,5 g weniger als ihr Frischvollgewicht von 53,3 + 4,3 g, woraus sich
ein Gewichtsverlust von 7,5%, ergibt. Das spez. Gew. des frischen Eies betrug nach
r
Wasserverdrängung und tatsächlichem Gewicht (T = 5) 1,081 + 0,0075 bzw. nach
einer späteren Studie und 143 Eiern 1,065 (BARTH 1967, S. 30).
Berechnungen für Zwecke der Oologie 149
Zitierte Schriften des Hauptteils
ALBERTUS Macnus (etwa 1270): De animalibus libri XXVL, in: STADLER, H. (1916— 1921): Beitr.
zur Philosophie des Mittelalters 15 u. 16, Münster i. W. 1664 S. (Schalendicke S. 444)
ANDREWS, C. W. (1911): Notes on some fragments of the fossil egg-shell of a large struthious bird
from southern Algeria, with some remarks on some pieces of the egg-shell of an Ostrich from
northern India. Verh. V. Int. Orn. Kongr. Berlin 1910 (Berlin, Deutsche Ornithologische Gesell-
schaft), S. 169— 174
BAILEY, S. (Quelle nicht ermittelt). \
BANZHAF, W. (1938): Der Frühjahrszug über die Greifswalder Oie nach Arten, Alter und Geschlecht.
Dohrniana (Stettin) 17, S. 23—69
BEHRE, A. & K. Frerıcas (1914): Zur Kontrolle des Marktverkehrs mit Eiern. Zschr. Untersuchung
Nahrungs- und Genußmittel (Berlin) 27, S. 33—59
BELCHER, CH. F (1930): Brutparasitismus bei den Webervögeln. Beitr. Fortpfl. biol. Vögel 6,
S. 73—75, Tafel III
BENNETT, A. G. (1927): The Black-bellied Storm Petrel, Fregetta tropica melanogaster, breeding in
South Shetlands. Ool. Rec. 7, S. 79
BENT, A. ©. (1922): Life histories of North American petrels and pelicans and their allies. Bull.
U. S. Mus. (Washinston, D. C.) 121. 343 S.
— (1932): Life histories of North American gallinaceous birds. Bull. U. S. Nat. Mus. 162. 490 S.
— (1939): Life histories of North American woodpeckers. Bull. U. S. Nat. Mus. 174. 334 S.
— (1948): Life histories of North American nuthatches, wrens, thrashers, and their allies. Bull.
U. S. Nat. Mus. 195. 475 S.
BERGTOLD, W.H. (1929): Egg weight from egg measurements. Auk 46, S. 466—473
CHAVIGNY, J.DE & R.LE DU (1938): Note sur l’adaption du coucou de l’Afrique du Nord, Cuculus
canorus bangsi Oberholser, suivie de quelques observations biologiques. Alauda 10, S. 91—115
CHODZIESNER, M. (1929): Wissenschaftliche Folgerungen aus der angewandten Geflügelzucht. J. £.
Orn. 77, S. 503—521
CLEVISCH, A. (1913): Beiträge zur Struktur und Physiologie der Vogeleischale. Diss. Zool. Inst.
Bonn. 48 S.
Currıs, M. R. (1914): Studies on the physiology of reproduction in the Domestic Fowl. 6. Double- and
triple-yolked eggs. Biol. Bull. (Woods Hole, Mass.) 26, S. 55—83
DATHE, H. (1950): Einige Beobachtungen bei Brutversuchen eines Wehrvogelpaares, Chauna
torquata (Oken). Zool. Gart. N. F. 17 (Schneider-Festschr.), S. 175—181
Des Muss, O. (1860): Traite general d’oologie ornithologique au point de vue de la classification.
Paris (Klincksieck). 640 S.
DIETRICH, F. (1929): Riesen- und Doppeleier, normale Eier, Spareier und Abnormitäten. Beitr.
Fertpfl. biol. Vögel 5, S. 132— 137
— (1934): Über Spareier. Ebenda 10, S. 184—187
DosAy, L. v. (1911): Siebenbürgische Spareier-Gelege. Z. Ool. (Krause) 1, 8. 43—44
DOMEIER, J. A. (1908): Über deutsche Eier von Sterna hirundo und macrurus. Z. Ool. Orn. 18,
S. 113—115
Epın, H., T. HELLEDAY & A. AnDERSsoN (1937): Beziehungen zwischen Oberfläche und Gestalt der
Hühnereier. Zschr. Untersuch. Lebensmittel (Berlin) 73, S. 313— 326
ERLANGER, C. v. (1904): Beiträge zur Vogelfaune Nordafrikas mit besonderer Berücksichtigung der
Zoogeographie. J. f. Orn. 52, S. 137 — 244
FECHNER, G. Te. (1849): Die mathematische Behandlung organischer Gestalten und Processe,
Ber. Verh. Sächs. Ges. Wiss. Leipzig. Math.-Phys. Kl. (Leipzig, Hirzel) 1849, S. 50— 64
FLOERICKE, K. (1918): Auf Forscherfahrt in Feindesland 2. Ornithologisch-wissenschaftliche Er-
gebnisse. Stuttgart (Kosmos/Franckh). 128 S.
FRANKENBERG, G. v. (1937): Hühnereier mit doppelter Schale („Ei im Ei‘). Geflügelbörse 58,
Nr. 34, S. 2
GODELMANN, E. (1904): Über die Eier einiger Vogelarten Australiens. Z. f. Ool. 14, S. 42—44
GoEBEL, H. & OÖ. OTTosson (1908): Miszellen. Z. f. Ool. Orn. 18, S. 41—46
GOETHE, F. (1937): Beobachtungen zur Biologie der Silbermöwe (Larus argentatus) auf der Vogel-
insel Memmertsand. J. f. Orn. 85, S. 1—119
150 Mathematischer Teil
GREENLEE, A.D. (1912): Osmotie activity in the egg of the Common Fowl. J. Amer. Chem. Soc.
(Easton, Pa.) 34, S. 539—545
GRINNELL, J., J. Dixov & J. M. Lisspare (1930): Vertebrate natural history of the section of
northern California through the Lassen Peak region. Univ. Cal. Publ. Zool. 35. 594 S.
GROEBBELS, F. (1927): Oologische Studien I. Untersuchungen über Gewichte, spezifische Gewichte
und Zusammensetzung von Vogeleiern verschiedener Bebrütungsstadien. J. f. Orn. 35, S. 225—235
— (1937): Der Vogel 2. Berlin (Borntraeger). 547 S.
GROSSFELD, J. (1938): Handbuch der Eierkunde. Berlin (Springer). 375 S.
Haag, F. (1909): Ei-Mißbildungen. Orn. Mon. ber. 17, S. 52
— (1911): Über Spareier. Z. Ool. (Stuttgart/München, Krause) 1, S. 76—77, 84—85
Härms, M. (1928): Über das Körpergewicht und die Eigröße der Kampfschnepfe (Philomachus
pugnax). Orn. Mon. ber. 36, S. 135—137
Hanna, W.C. (1924): Weights of about three thousand eggs. Condor 26, S. 146— 153
HanTzscH, B. (1905): Beitrag zur Kenntnis der Vogelwelt Islands. Berlin (Friedländer). 341 S.
HARTERT, E. (1903— 1922): Die Vögel der paläarktischen Fauna. 3 Bde. Berlin (Friedländer)
2328 S.
HEISROTH, O. (1922): Die Beziehungen zwischen Vogelgewicht, Eigewicht, Gelegegewicht und Brut-
dauer. J. f. Orn. 70, S. 172—285, 7 Kurventafeln
HELLEBREKERS, W.P.J. (1950): Measurements and weights of eggs of birds on the Dutch list.
Leiden (Brill), 21 S.
— (1951): A cockoo puzzle. Ool. Rec. 25, S. 14—16
Hesse, E. (1915): Bernhard Hantzschs ornithologische Ausbeute in Baffinland. Anhang: Oologisch-
nidologische Ausbeute. J. f. Orn. 63, S. 213—227
Horrz, L. (1870): Beschreibung südamerikanischer Vogel-Eier. J. f. Orn. 18, S. 1—24
Hume, A. (1873): Nests and eggs of Indian birds 1. Calcutta. 236 S.
Hvxrey, J.S. (1927): On the relation between egg-weight and body-weight in birds. J. Linnean Soc.
London Zool. 36, S. 457 —466, Taf. 25—29
Jacog, E. (1929): Zwergeier-Betrachtung. Beitr. Fortpfl. biol. Vögel 5, S. 75—76
JOURDAIN, F.C.R. (1925): Oologische Merkmale als Hilfsmittel für die Systematik. Beitr. Fortpfl.
biol. Vögel 1, S. 48—49 ’
KIRCHNER, H. (1962): Friedrich Moebert. Abh. Verh. Natw. Ver. Hamburg N. F. 6, S. 40—43
Kornıg, A. (1924): Die Sänger (Cantores) Ägyptens. J. f. Orn. 72. Sonderh. 277 S. N
— (1932): Die Schwimmvögel (Natatores) Ägyptens. Die Ruderfüßer (Steganopodes) Ägyptens.
Die Flügeltaucher (Urinatores) Ägyptens. J. f. Orn. 80. Sonderh. 237 S.
KoENIG-WARTHAUSEN, R. v. v. zu (1885): Über die Gestalt der Vogeleier und über deren Monstrosi-
täten. Jh. Ver. vaterl. Naturk. Württemberg (Stuttgart) 41, S. 2839—305
KrAUSE, G. (1900): Aepyornis-Eier. Orn. Mon.schr. (Gera-Untermhaus) 25, S. 299—304, 1 Tafel
— (1905—1913): Oologia universalis palaearetica. 78 Teile. Stuttgart (Lehmann). 158 Farbtaf.
— (1911): Die Oologie und ihre Eigenheiten. Z. Ool. (Krause, München, F. Lehmann) 1, S. 3—4, 21
KrÜrer, Ta. J.: Sammlung (zum Teil bei Henrici und Schönwetter; Quelle zu Zitat Bd. IV, S. 43,
fraglich)
Kusc#eL, M. (1895): Abriß einer Beschreibung von Vogeleiern der Ethiopischen Region. J. f. Orn.
43, S. 80—98, 321— 354
Kutter, F. (1877—1878): Betrachtungen über Systematik und Oologie vom Standpunkt der
Selektionstheorie. J. f. Orn. 25, S. 396—423; 26, S. 300—348
— (1880): Bemerkungen über einige oologische Streitfragen. J. f. Orn. 28, S. 257—287
— (1889): Über die wissenschaftliche Bedeutung der Oologie. Ber. Ver. Naturk. Kassel 34/35,
S. 67—85
LAFRESNAYE, F. DE (1845): Comparaison des oeufs des oiseaux avec leurs squelettes, comme seul
moyen de reconnaitre la cause de leurs differentes formes. Rev. Zool. (Paris) 1845, S. 180ff. u.
239ff.
Leese, O. (1911): Brutergebnis der Vogelkolonie Memmert von 1909/10. Orn. Mon schr. 36, S. 37 bis
61
LEVERKÜRN, P. (1891): Fremde Eier im Nest. Berlin (Friedländer). 212 S.
Liscors, F. C. (1934): A full set of “runt” Mallard eggs. Condor 36, S. 86—87
Lowe, P.R. (1931): Struthious remains from China and Mongolia; with deseriptions of ... Palaeont,
Sinica (Peiping) Ser. C. 6, Heft 4. 40 S.
Berechnungen für Zwecke der Oologie 151
MACKWORTH-PRAED, C. W. & C. H. B. GRANT (1952): Birds of Eastern and North Eastern Africa.
African handbook of birds (1) 1. London ... (Longmans, Green & Co.). 836 S.
MARATSCH, W. (1949): Der Vogel und sein Ei. Neue Brehm-Bücherei 3. Wittenberg (Ziemsen).
108 S.
MARSHALL, W. (1895): Der Bau der Vögel. Leipzig (Weber). 462 S.
MEISSEL, J. briefl. an GOETHE
MOoEBERT, F. siehe KIRCHNER (andere Quelle zu Zitat Bd. IV, S. 80, wohl mündlich)
Mogaum-Tanopon, A. (1859— 1861): Considerations sur les oeufs des oiseaux. Rev. Mag. Zool. (2)
11, S. 414—416, 469—477; 12, S. 11—19, 57—62, 193—205; 13, S.5—12, 97—115, 197—205,
385 — 390
NASIMOVITSH, A. A. (1937): The variation in weight of some species of Tetraonidae in different
geographical regions. Arch. Mus. Zool. Moscou 3, S. 197—198
Narsusıus, W. v. (1882): Über die Bedeutung von Gewichtsbestimmungen und Messungen der
Dicke bei den Schalen von Vogel-Eiern. J. f. Orn. 30, S. 129—161
NEHRKORN, A. (1910°): Katalog der Eiersammlung. Berlin (Friedländer). 449 S.
NTETHAMMER, G. (1942): Handbuch der deutschen Vogelkunde. Leipzig (Akad. Verlagsges.) 3. 568 S.
OLIVER, W.R.B. (1930): New Zealand birds. Wellington (Fine Arts). 541 S.
Orrow, B. (1950): Individuelle Variation und erbliche Mutationstypen in der Färbung der Vogel-
eischale mit kritischen Bemerkungen zur Entstehung der Schalenfärbung. Ark. Zool. (Stockholm)
(2) 1, S. 59—79
PEARL, P. & F. M. Surracz (1910): A biometrical study of egg production in the Domestic Fowl
III. Variation and correlation in the physical characters of the egg. U. S. Dept. Agr. Bur. An
Ind. Bull. 110, S. 171— 241
PENARD, F. P. & A. P. (1908. 1910): De vogels van Guayana. 2 Bde. Paramaribo (Autoren). 587
+ 587 8.
PETERS, J. L. (1931, 1934): Check-list of birds of the world 1. Cambridge, Mass. (Harvard Univ.
Press). 345 S. — 2 (ebenda). 401 S.
REICHENAU, W. v. (1880): Die Nester und Eier der Vögel in ihren natürlichen Beziehungen be-
trachtet. Darwin. Schr. 9. Leipzig (Günther). 110 S.
REICHENoWw, A. (1899): Die Vögel der Bismarckinseln. Mitt. Zool. Mus. Berlin 1, Heft 3, S. 1—106
REISER, O. (1894): Materialien zu einer Ornis balcanica. II. Bulgarien. Wien (Gerolds). 204 S.
Rey, E. (1892): Altes und Neues aus dem Haushalte des Kuckucks. Leipzig (Freese). 108 S.
— (1905): Die Eier der Vögel Mitteleuropas. Gera-Untermhaus (Köhler) Text. 681 S.
ROMANOFF, A. L. & A. J. (1949): The avian egg. New York (Wiley). 918 S.
SCHLEGEL, R. (1925): Die Vogelwelt des nordwestlichen Sachsenlandes. Leipzig (Weg). 274 S.
SCHÖNWETTER, M. (1925): Relatives Schalengewicht insbesondere bei Spar- und Doppeleiern.
Beitr. Fortpfl. biol. Vögel 1, S. 49—51
— (1928): Anmerkungen zum Nehrkorn-Katalog. Ebenda 4, S. 49—53, 89—98, 129— 136, 181—192,
200— 204
— (1930): Die Schalendicke der Vogeleier und der Rey’sche Quotient. Ebenda 6, S. 185—193
— (1932): The mathematical side of oology, as applied to the study of cuckoos’ eggs. Ool. Rec. 12,
S. 83—86
STADLER, H. s. ALBERTUS MAGNUS
STIMMING, R. (1932): Abnorme Vogeleier meiner Sammlung. Beitr. Fortpfl. biol. Vögel 8, S. 153 bis
155
STRESEMANN, E. (1927— 1934): Sauropsida: Aves, in: Handbuch der Zoologie (her. W. KüÜKENTHAL
& Tu. Krumsach). Berlin (de Gruyter) 7, 2. Hälfte. 899 S.
— (Quelle des Zitats S. 59 nicht gefunden, vielleicht briefl. an SCHÖNWETTER)
SZIELASKO, A (1902): Die Bildungsgesetze der Vogeleier bezüglich ihrer Gestalt. Gera-Untermhaus
(Köhler). 23 S.
— (1905): Die Gestalt der Vogeleier. J. f. Orn. 53, S. 273—297
— (1913): Die Bedeutung der Eischalenstruktur der Vögel für die Systematik. J. f. Orn. 61, S. 52
bis 117, 229— 361
— (1920): Die Gestalt der normalen und abnormen Vogeleier, analytisch betrachtet. Berlin (Junk).
121 S.
TIMMERMANN, G. (1930): Über die Schalenstärke einiger Vogeleier. Verh. Natw. Ver. Hamburg (4)
4, S. 45—60
152 Mathematischer Teil
TIMMERMANN, G. (1931): Mitteilungen über einige Vogeleier aus Zentral-Polynesien. Beitr. Fortpfl.
biol. Vögel 7, S. 104— 107, 139— 141.
WAHLGREN, F. (1871): Ein Ei im Eie. J. f. Orn. 19, S. 260—265
WENDLANDT, P. (1913): Über die Brutverhältnisse und Eiermaße der in der westlichen Paläark-
tischen Region lebenden Eulenarten. J. f. Orn. 61, S. 409—443
ZIEMER, W. & G. Krause (1906): Ein Unicum. Z. Ool. 16, S.45—46
Schrifttum der Ergänzungen
AmaADon, D. (1943): Bird weights and egg weights. Auk 60, S. 221— 234
ANDERSoNn, J. F., H. Rauv & H. D. Prance (1979): Scaling of supportive tissue mass. Quart. Bev.
Biol. 54, S. 139—148 (auch in: Raun & PAGAneLLı 1981, S. 333 — 342)
Ar, A., C. V. PAGANELLI, R. B. REEvEs, D. G. GREENE & H. Ran (1974): The avian egg: water
vapor conductance, shell thiekness, and functional pore area. Condor 76, S. 153—158 (auch in:
RAHx & PAGAneELLi 1981, S. 107— 112)
Ar, A., & H. Raus (1978): Independence of gas conductance, incubation length, and weight of the
avian egg. In: J. PırperR (ed.): Respiratory function in birds, adults and embryonic. Berlin ...
(Springer), S. 227—236 (auch in: Raux & PAGAneLLı 1981, S. 113— 122)
— & — (1980): Water in the avian egg: overall budget of incubation. Amer. Zool. 20, S. 373—384
(auch in: RaHw & PAGANELLI 1981, S. 225— 236)
BArTH, E.K. (1953): Caleulation of egg volume based on loss of weight during incubation. Auk 70,
S. 151—159
— (1967): Egg dimensions and laying dates of Larus marinus, L. argentatus, L. fuscus and L. canus.
Medd. Zool. Mus. Oslo 81 (auch Nytt Mag. Zool. 15, 1968), S. 5—34
Brown, W.Y. (1976): Egg specifie gravity and incubation in the Sooty Tern and Brown Noddy.
Auk 9, S. 371—374
CAREY, C. (1979): Increase in conductance to water vapor during incubation in eggs of two avian
species. J. exp. Zool. (Philadelphia) 209, S. 181—186
CosRAD, B. (1977): Die Giftbelastung der Vogelwelt Deutschlands. Vogelkdl. Bibl. 5 (Greven,
Kilda-Verl.). 68 S.
— (1978): Gefährdung der einheimischen Vogelwelt durch chlorierte Kohlenwasserstoffe. Kleintier-
Praxis (Hannover) 23, S. 837—94
COOoRE, A.S. (1973): Shell thinning in avian eggs by environmental pollutants. Environm. Pollution
(London) 4, S. 85—152
CoULSEN, J.C. (1963): Egg size and shape in the Kittiwake (Rissa tridactyla) and their use in estimat-
ing age composition of populations. Proc. Zool. Soc. London 140, S. 211—227
DRENT, R. (1970): Functional aspects of incubation in the Herring Gull. Behaviour Suppl. 17. 132 S.
— (1975): Incubation. In: D. S. FARNER & J. R. King (ed.): Avian biology 5 (New York ..., Acad.
Press), S. 333 —420
EnDes, M., L. Horvät# & B. HüTtLer (1967): The life history of the Hungarian Short-tailed Lark
Calandrella eincerea hungarica Horväth, 1956, in Hortobägy, Hungary. Acta Zool. Cracov. (Kra-
köw) 12, S. 379—391
GRANT, P. R. (1982): Variation in the size and shape of Darwin’s Finch eggs. Auk 99, S. 15—23
— (1983): The relative size of Darwin’s finch eggs. Auk 100, S. 223— 230.
HAArTMaNn, L. v. (1971): Einige Bemerkungen über die Form des Vogeleies. Vogelwarte 26, S. 185
bis 192
Hıckey, J. J. & D. W. Anperson (1968): Chlorinated hydrocarbons and eggshell changes in rap-
torial and fish-eating birds. Science (N.Y.) 162, S. 271—273
HOERSCHELMANN, H., K. POLZHOFER, K. FısGE & K. BaArLscHnEider (1979): Organochlorid-
pestizide und polychlorierte Biphenyle in Vogeleiern von den Falklandinseln und aus Nord-
deutschland. Environm. Pollution 25, S. 247—269
Hoyr, D. F. (1976): The effects of shape on the surface-volume relations of birds’ eggs. Condor 78,
S. 343 — 349
— (1979): Practical methods of estimating volume and fresh weight of bird eggs. Auk 96, S. 73—77
(auch in: Rau & PAGAseLLı 1981, S. 319—323)
—, R. G. BoArp, H. Rau & C. V. Pacaxerrı (1979): The eggs of the Anatidae: conductance,
pore structure and metabolism. Physiol. Zool. 52, S. 438—450 (auch in: RAHN & PAGANELLI 1981,
Ss. 129— 141)
Berechnungen für Zwecke der Oologie 153
Jones, P. J. (1973): Some aspects of the feeding ecology of the Great Tit Parus major L. — Ph.
D. Thesis Oxford. Nach SOJANEN u. a. zitiert.
Kırr, L. F.& D. B. PEAKRaur (1981): Eggshell thinning and organochlorine residues in the Bat and
Aplomado Faleons in Mexico. Acta XVII Congr. Int. Orn. (Berlin, Deutsche Orn.-Ges.), S. 949— 952
Lack, D. (1968): Eeological adaptations for breeding in birds. London (Methuen). 409 S.
LoFTISs, R. W.& R. D. Bowman (1978): A device for measuring egg volume. Auk 95, S. 190— 192
MARTIN, R.D. & R. M. May (1981): Relative brain size and basal metabolic rate in terrestrial verte-
brates. Nature (London) 293, S. 57—60
Mess, T. (1964): Greifvögel Europas und die Grundzüge der Falknerei. Stuttgart (Franckh). 140 S.
MvrToN, R. K., N. J. Westwoop & A. J. Isaacson (1974): Factors effecting egg-weight, body-
weight and moult of the Woodpigeon Columba palumbus. Ibis 116, S. 52— 73
NEWTOoN, I. & J. Boca (1978): The role of different organochlorine compounds in the breeding of
the British sparrow-hawks. J. appl. Ecol. 15, S. 105—116
NYHorM, E. & O. Gmstkup (1968): A balance for weighing eggs of; smaller birds in the field. Oikos
(Kopenhagen) 19, S. 149— 151
ÖHLENDORF, H. M., E. E. Kraas & T. E. Kasser (1978): Environmental pollutants and eggshell
thinning inthe Black-erowned Night Heron. In: ©. A. Sprunt IV, J. T. OGDEN & S. WINCKLER
(ed.) : Wading birds. Res. Rep. 7 Nat. Aud. Soc. (New York, Nat. Aud. Soc.), S. 63—82
—, — & — (1979): Environmental pollutants and eggshell thickness. Anhingas and wading birds
in the eastern United States. U. S. Fish & Wildl. Serv. Spec. sci. rep. (Washington, D. C., Wildlife)
216. 94 S.
OJANEN, M., M. ORELL & R. A. VÄısÄnen (1979): Role of heredity in egg size in the Great Tit Parus
major and the pied flycatcher Ficedula hypoleuca. Ornis Scandinavica (Kopenhagen) 10, S. 22—28
O’MALLEY, J.E.& R.M. Evans (1980): Eggs’use as a hatchprediction. Can. J. Zool. 58, S. 603— 608
PAGANELLIL, ©. V. (1980): The physics of gas exchange across the avian eggshell. Amer. Zoci. 20,
S. 329—338 (auch in: RAHn & PAGAnELLI 1981, S. 85 — 94)
PAGANELLI, ©. V., A. OLSZOWEA & A. Ar (1974): The avian egg: surface area, volumen, and density.
Condor 76, S. 319— 325 (auch in: RAHn & PAGAnELLI 1981, S. 311— 317)
PALMER, R.S. (ed.) (1962): Handbook of North American birds 1. New Haven & London (Yale
Univ. Press). 567 S.
PRESToN, F. W. (1953): The shapes of birds’ eggs. Auk 70, S. 160—182
— (1968): The shape of birds’ eggs: mathematical aspects. Auk 85, S. 454—463
— (1974): The volume of an egg. Auk 91, S. 132—138
— & E.J. Preston (1953): Variation of the shapes of birds’eggs within the celutch. Ann. Carn.
Mus. 33, S. 129—139
PRINZINGER, G. & R. (1980): Pestizide und Brutbiologie der Vögel. Vogelkdl. Bibl. 12. (Greven,
Kilda-Verl.) 78 S.
PRUETT-Jongs, S. G., F. C. M. WHıte & W. B. Emısox (1981): Esgshell thinning and organo-
chlorine residues in eggs and prey of Peregrine Falcons from Victoria. Emu 80, Suppl., S. 2831—287
RAHn, H. (1984): Comparisons of initial egg mass: measured and caleulated values. 3 S. MS brieflich
RAHn, H. & A. Ar (1974): Incubation time and water loss. Condor 76, S. 147—152 (auch in: RAHN
& PacanerLı 1981, S. 169— 174)
RıAun, H., A. Ar & C. V. Pacanerıı (1979): How bird eggs breathe. Sci. Amer. 240, S. 46—55
(zitiert nach RAHBN & PAGANELLI 1981, S. 281— 291)
RAHN, H., C. CAREY & K. Barmas, B. BHatta & C. V. PaganerLı (1977): Reduction of pore area of
the avian eggshell as an adaptation to altitude. Proc. Nation. Acad. Sci. 74, S. 3095— 3098 (auch
in: RAHN & PAGANELLI 1981, S. 165— 168)
RAHN, H., C. V. PAGANELLI & A. Ar (1975): Relation of avian egg weight to body weight. Auk 92,
S. 750—765 (auch in: RAHn & PAGANELLI 1981, S. 343— 353)
RAun, H. & €. V. PAGANELLI (ed.) 1981: Gas exchange in avian eggs. Buffalo (State Univ. of New
York). 358 S.
Rıun, H., C. V. PısaneLLı & P. R. SOTHERLAND (1985): Initial mass of avian eggs: Comparison
between measured and calculated values. J. f. Orn. 126, S. 210— 212
RATCLIFFE, D. A. (1967): Decrease in eggshell weight in certain birds of prey. Nature 215, S. 208— 210
REHKUGLER, G. E. (1973): Characterizing the shape of a hen’s egg. Poultry Science (Ithaca, N.Y.)
52, 8. 127—138
154 Mathematischer Teil
ScoTT, D. M. & C. D. Anksey (1983): Do Darwin’s Finches lay small eggs? Auk 100, S. 226— 227
SHorTT, A.R. & F. W. Preston (1975): The surface area of an egg. Condor 77, S. 103— 104
SOTHERLAND, P. R., G. C. PACKARD, T. L. TAIGEN & T. J. BROoADMAN (1980): An altitudinal eline in
conductance of Cliff Swallow (Petrochelidon pyrrhonota) eggs to water loss. Auk 97, S. 177—185
STONEHOUSE, B. (1963): Egg dimensions of some Ascension Island sea-birds. Ibis 103b, S. 474—479
— (1966): Egg volume from linear dimensions. Emu 65, S. 227 — 228
Tarum, J. B. (1975): Egg volume. Auk 92, S. 576—580
— (1977): Area-volume relationship for a bird’s egg. Condor 79, S. 129—131
TYL&r, C. (1945): The porosity of egg shells, and the influence of different levels of diatary caleium
upon porosity. J. Agric. Sci. 35, S. 168— 176
— (1964): Einige chemische, physikalische und strukturelle Eigenschaften der Eischalen. J. f. Orn.
105, S. 57—63
— (1969): The snapping strength of the egg shells of various orders of birds. J. Zool. (London) 159,
S. 69— 77
TYLErR, C. & S. FowLer (1978): The distribution of organic cores, cones, core junctions and pores
in the egg shells of wild birds. J. Zool. (London) 186, S. 1—14
WESTERSKov, K. (1950): Methods for determining the age of game bird eggs. J. Wildl. Manag. 14,
S. 56—67
WOoRrTH, C. B. (1940): Egg volumes and incubation periods. Auk 57, S. 44—60
155
Personenregister
ALBERTUS Macnts 84, 149, 151 GINSTRUP, ©. 142, 153
AmADon, D. 144, 152 GODELMANN, E. 43, 149
AÄNDERSoNn, D. W. 145, 152 GOEBEL, H. 37, 149
AÄNDERSONn, J. F. 143, 152 GOETHE, F. 16, 58, 149
ANDERSSson, A. 110, 112, 149 GRANT, C.H. B. 77, 151
ANDREWwS, C. W. 80, 149 GRANT, P. R. 147, 152
ANKNEY, ©. D. 144, 154 GREENE, D. G. 147, 152
Ar, A. 117, 142 —144, 146—148, 152, 153 GREENLEE, A.D. 124, 150
GRINNELL, J. 30, 33, 150
BAILEY, Sh. 77, 149 GROEBBELS, F. 17, 18, 32, 37, 41, 57, 58, 75, 77,
BALLSCHNEIDER, K. 146, 152 95, 120, 122, 123, 147, 148, 150
BALMAS, K. 148, 153 GROSSFELD, J. 10, 56, 76, 110, 112, 121, 122,
BANZHAF, W. 59, 149 124, 133, 137, 150
BARTH, E.K. 145, 147, 148, 152
BEHRE, A. 122, 149 Haag, F. 18, 20, 95, 150
BELCHER, Ch. F. 54, 107, 149 HAARTMAN, L. v. 141, 152
BENNETT, A. G. 32, 149 Hirnms, M. 59, 150
BENT, A.C. 18, 33, 149 HANNA, W.C. 33, 150
BERGTOLD, W.H. 9, 58, 122, 134, 149 HANTZScH, B. 17, 40, 59, 150
BHATIA, B. 148, 153 HARTERT, E. 37, 78, 150
BoARD, R. G. 148, 152 HEINROTH, O. 10, 27, 29, 31, 33, 34, 41, 57 —61,
BogGan, J. 146, 153 68, 70, 71, 74—77, 116, 122, 123, 125, 128,
Bowman, R.D. 142, 153 139, 140, 143, 144, 150
BROADMAN, T. J. 148, 154 HELLEBREKERS, W. Ph. J. 13, 106, 107, 150
Brown, W.Y. 147, 152 HELLEDAY, T. 110, 112, 149
Hesse, E. 40, 150
CAREY, C. 148, 152, 153 Hickzy, J.J. 152
CHavIcNnY, J. de 106, 149 HOERSCHELMANN, H. 146, 152
CHODZIESNER, M. 79, 149 Houtz, L. 37, 150
CLEVISCH, A. 43, 80, 117, 119, 149 HorvAra, L. 141, 152
CoNRAD, B. 145, 146, 152 HovT, D. F. 141—143, 146, 148, 152
Cook, A.S. 145, 152 HüÜTTLeER, B. 141, 152
CoULsoNn, J.C. 142, 152 Huns, A. 60, 150
Currıs, M. P. 14, 149 Huxısy, J.S. 60, 61, 71, 74, 139, 150
DATHE, H. 122, 149
Des Muss, O. 12, 13, 16, 137, 149
DIETRICH, F. 17, 18, 95, 96, 100, 149
Isaacson, A. J. 147, 153
Dıxon, J. 30, 150 Jacog, E. 17, 150
Dosav, L. v. 95, 149 ers, 2 1
DoMmEIER, H. 37, 149 JOURDAIN, F.C.R. 11, 150
DRENT, R. 142, 147, 148, 152
Dö, BR. LE 106, 149 KAISER, 4, 10% 145, 153
Kirr, L. F. 146, 153
Epın, H. 110, 112, 149 KIRCHNER, H. 150, 151
Emıson, W.B. 146, 153 Kraas, ER. E. 145, 153
ENDES, M. 141, 152 KoENIG, A. 40, 43, 150
ERLANGER, C. v. 37, 76, 149 KOENIG-WARTHAUSEN, R. v. u. zu 12, 18, 150
Evass, R.M. 152 KRAUSE, G. 39, 40, 95, 150, 152
KRÜPER, Th. J. 18, 43, 150
FECHNER, G. Th. 129, 149 KUScHEL, M. 34, 37, 150
FIG6E, K. 146, 152 KUTTER, F. 12, 34, 37, 150
FLOERICKE, K. 111, 116, 149
FRANKENBERG, G. v. 20, 149 LAcK, D. 143, 144, 153
FRERICHS, K. 122, 149 LAFRESNAYE, F. de 75, 150
156
LE Di, R. 16, 149
LEEGE, O. 16, 150
LEVERKÜHN, P. 37, 150
Lincorn, F. C. 18, 150
LINSDALE, J. M. 30, 150
LorFrTin, R. W. 142, 153
Lowe, P. R. 80, 150
MACKWORTH-PRAED, C. W. 77, 151
MAKATSCH, W. 3, 69, 151
MARSHALL, W. 75, 78, 151
MARTIN, R. D. 144, 153
MAYAUD, R.M. 144, 153
Mess, T. 143, 153-
MEISE, W.3
MEISSEL, J. 58, 151
MOEBERT, F. 57, 80, 150, 151
MogouvıIn-TanDon, A. 80, 151
MvRToN, R.K. 147, 153
NASIMOVITSH, A. A. 59, 151
NATHUSIUS, M. v. 37, 80, 84, 151
NEHRKORN, A. 33, 34, 43, 77, 79, 151
NEWTOoNn, I. 146, 153
NIETHAMMER, G. 59, 151
NYHOLM, E. 142, 153
ÖHLENDORF, H.M. 145, 153
OJANEN, M. 143, 153
OLIVER, W.R.B. 34, 151
OLSZOWKA, A. 142, 143, 146, 147, 153
O’MALLEY 147, 153
ÖRELL, M. 143, 153
ÖTTOSSoN, ©. 37, 149
OrTTow, B. 130, 151
PACKARD, G. ©. 148, 154
PAGANELLI, ©. V. 142—144, 146— 148, 152, 153
PALMER, R. S. 140, 153
Prier.P. 58, 151
PEEKALL, D: B. 146, 153
PENARD, A.P. & F. P. 13, 151
PETERS, J. L. 3, 44, 71, 151
POLZHOFER, K. 146, 152
PRANGE, H.D. 143, 152
PRESToN, E. J. 141, 153
Preston, F. W. 141, 142, 146, 153, 154
PRINZINGER, G. & R. 145, 153
PRUETT-JoNEs, S. G. 146, 153
Rıaun, H. 142—144, 147, 148, 152, 153
RATCLIFFE, D. A. 145, 153
REEVES, R. B. 147, 152
REHKUGLER, G. E. 141, 153
REICHENAUT, W.v. 29, 151
REICHENOWw, A. 37, 151
REISER, O. 37, 151
Rey, E. 18, 19, 37, 57, 78, 831, 3, SEE
106—108, 151
RoMANOFF, A.J. & A.L. 56, 84, 119, 151
SCHLEGEL, R. 59, 151
SCHÖNWETTER, M. 3, 9, 18, 19, 23, 24, 33, 42,
45, 59, 68, 69, 100, 105, 106, 112, 113—115,
140, 141, 143, 145, 151
ScoTT, D. M. 144, 154
SHOTT, A. R. 146, 154
SOTHERLAND, P. R. 142, 148, 153, 154
STADLER, H. 84, 149, 151
STEINER, J. 129
STIMMING, R. 18, 95, 96, 108, 151
STONEHOUSE, B. 141, 154
STRESEMANN, E. 31, 33, 59, 151
SURFACE, F. W. 58, 151
SZIELASKO0, A. 9, 13, 20— 23, 111, 116, 129 bis
131, 133, 134, 139, 140, 151
TAIGEN, T. L. 148, 154
TATum, J. B. 142, 146, 154
TIMMERMANN, G. 80, 84, 111, 116, 151, 152
TYLER, C. 145, 148, 154
VÄISÄNEN, R. A. 143, 153
WAHLGREN, P. 19, 152
WENDLANDT, P. 80, 152
WESTERSKOV, K. 141, 154
WESTwooD, N. J. 147, 153
WHITE, F.C.M. 146, 153
WORTH, C. B. 141, 154
ZIEMER, W. 18, 152
Stichwortregister
(Die Ziffern bedeuten Seitenzahlen im Mathematischen Teil)
A = Längsachse 11 und besonders 88— 94
Abnormitäten der Gestalt und Größe 16-20
Achsen 11, 13, 114 und oft
Äquator 140, 142
Allgemeiner Teil des Handbuchs 3
Alter des Vogels und Eigröße 11,17
— — — und Relatives Eigewicht (RG) 74
Anzahl der erfaßten Arten und Unterarten 9
Apothekerwaage 41
Asymmetrie 20, 140
B = Breitenachse 11 und besonders 88— 94
Bebrütung 147
Berechnung (vollständige) eines Vogeleies 9
Bicone 140
Biphenyle 145
birnförmige Eigestalt 14, 21
Bohrloch 37
Bruchtestigkeit 145
Brutparasiten-Eier 52—54, 101, 104—108
ce = Gestaltsfaktor
Cartesisches Oval, siehe Steiner-Oval
9, 24-26
eylindrische Gestalt 21
d = Schalendicke (siehe dort)
DDE, DDT (Biozide) 145
Dicke, siehe Schalendicke
Dickenfaktor 82 —83
Diffusion (Strömung) durch Kalkschale 147
Diffusionskapazität 148
Domestikation und Eigröße 79
Dopphöhe 10, 13, 26
Dotter 31, 129
e = Teilungsverhältnis auf der Achse A 13,
20—24 und oft
Eigentliche Eigestalt 12
Eiklar 10, 14, 31, 129
Eikurve 21
Eileiter 16, 17
Einschnürung am schmaleren Eiende 20
Eiweiß, siehe Eiklar
„Eizahl‘“ AB? (egg value) 144
Ellipsoid 24—27, 31 und oft
elliptische Gestalt 12—16, 20— 21, 24
Erschöpfungszustand des Eileiters 16
Erstlingseier 17
excentrischer Winkel (9) Theta 142
"Fehlerabschätzung 9-10
Flügellänge und Relatives Eigewicht (RG) 75
Formelvereinfachungen 137
Frischvollgewicht (G) 25, 27 —28
Gamma (T', y), siehe spez. Gewicht
G = Frischvollgewicht, siehe Gewicht
g = Schalengewicht (siehe dort) und = Gramm
Gefangenschaft und Eigröße a1 —19
Gelege: Anzahl Eier 35—36, 63—67
— , Anzahl der Eier und Gewicht des Einzeleies
57 —59
— und Gestalt des Eies 17, 141
— und Gestalt bei Verwandten 141
—, Gestalt und Lage im Nest 141
— und Eigröße 18—20, 75—77
—, Veränderung der Eizahl im Gelege 17, 144
— , Leistung des und Flügelform 75
Gelegegewicht, Relatives, siehe Gewicht
157
geographische Schwankung der Eigröße in der
Art 11—12
Gestalt des Eies 11-27, 129—136, 140 — 141
— , Kriterien und Faktoren 12—13, 20—27
— Variation 11—12, 14, 16, 20—27
— und absolute Eigröße 12, 141
— , Szielaskos Formeln und Gesetze 129—136
Gewicht des Eies 10, 27—79, 142 — 143
— absolutes 33—35, 102—105 und oft
—, Variation im Gelege 88 —94
— , Variation in der Art 35—36
—, in Gefangenschaft und Domestikation
77—79
— , Berechnung 29— 32
—, Berechnung der Dimensionen aus dem .Ge-
wicht 32 —33
— , Berichtigung falscher Angaben 40—41
— und Dimensionen 58
— , Verlust durch Luftkammer 25 —29
—, Abnahme durch Verdunstung und Bebrü-
tung 121 —124, 147, 148
— bei Jungvögeln 27
— und Länge des Vogels 34
— und Gewicht des 2, s. auch Gewicht,
Relatives 34
— ım Wasser 148
Gewicht des Geleges, auch Relatives 75—77,
144
Gewicht, Relatives, des Eies (RG) 34, 60—75
—, —, der Familien des Systems 63 — 70
—, —,im Gelege 75
—, —,in Vogelgewichtsgruppen 71—74
—, —, Gründe für das Schwanken 74—75
—, —, des Geleges 75—77, 144
— der Schale, siehe Schalengewicht 21, 136
— , spezifisches, siehe spez. Gew.
— des Weibehens 33—35, 59—60, 142—143
Größe, siehe auch Gewicht 27 —79
—, „klein“ und ‚‚gsroß“, zwei Deutungen 74
— , Relative, s. auch Gewicht, Relatives 62
Härte 149
Hexachlorbenzol 145
Höhenwirkung auf Porenzahl 148
Höhlenbrüter 54—55
Huxley-Kurven 143
Inhalt (Eiinhalt) 142
Insektizide (Insekten-Vertilgungsmittel) 145
K = Funktion von k für Oberflächen-
berechnung 109, 110, 119
k = Achsenverhältnis 11, 20—24, 89 — 94,
140 — 141
— , Variation im Gelege s9— 93, 141
Kalkverlust der Schale 38
Kappa- (x-) Methode 114—115
158
konische Gestalt 21
Kreiselgestalt 14—15, 20—21, 24, 26
Krümmungsradius 26, 140 — 141
Kugelgestalt 14, 16, 20— 21, 24
Kurven nach Szielasko 129—136
Längsachse, siehe A
Legeleistung 17, 145
Luftkammer 2728; 30, 142
m, siehe Dickenfaktor
Mißbildungen 16
Monstrositäten 20
Nachgelege 17
Nahrung und Ei 16—17, 75, 77, 144— 146
Nestflüchter 55-57, 63—69
Nesthocker 55—57, 63—69
Nesträuberei 144
Normalei 21, 136
O = Oberfläche 26, 108—111, 146
Öffenbrüter 5455, 63—69
Organochloride 145
ovaläre Gestalt (ovateness) 21, 140
Oval, cartesianisches 130
Ovoid 24
Pestizide 145
pfeilförmige Gestalt 21
Phi (p) = Gestaltsfaktor 9, 24—26 und oft
Platzhocker 63 --67, 69
polychlorierte Biphenyle 146
Poren 148
Q und q, siehe Reysche Quotienten
R = Radius der Eikrümmung 140 — 141
Reihenfolge der Eiablage 129
Reysche, Rey- oder Reys Quotienten (Q und q)
20, 101—108
RG = Relatives Eigewicht, s. Gewicht,
Relatives
Rg = Relatives Schalengewicht 44-57, 143
Rieseneier 16, 95, 98— 101, 107—108
Rotationsellipsoid 9, 26
Schalendefekt 37—39
Schalendicke (= d) 79—101, 145 —146
— vieler Arten 102 — 105
— , Variation am selben Ei 81—87
—, Variation im Gelege 88 —93
— , Variation in Art und Familie 86—88
— bei Zwerg- und Rieseneiern 95, 97—101
— , Diekenfaktor 81—84
— und Breitenachse, RG, G und andere
Schalenwerte 94 — 97, 145
— und Reyscher Quotient 101, 105
Schalendicke, Abnahme durch 145 —146
Umweltschäden
Schalengewicht (g) 29, 31, 36—44
— , Nützlichkeit der Angabe 42 —44
—, Berechnung 42
—, —, bei Verdeckt- und Offenbrütern 54—55
—, bei Nestflüchtern und -hockern 55—57
—, Variation 41—42
—, Verlust durch Schalendefekt 37—39
Schalengewicht, Relatives 44 —57, 143
—, —, vieler Arten 102—105
—, —, und Eigröße allgemein 45 —46
—, —, und Eigröße in Familien 47 —50
—, —, Schwankung in der Art 51—52
—, —, Schwankung im Gelege 89—94
—, —, bei Brutparasiten 52—54
—, —, und Eiklarmenge 75
—, —, und dunklere Färbung 75
Schalenhaut 338—39, 117—119
Schweben im Wasser 148
Spareier 17
spez. Gew. (== spezifisches Gewicht)
des Eies (1) 10, 119—129, 147
— — bei Verdunstung und Bebrütung
123—129
— — der Schale (y) 10, 31, 116—119, 147
— — des Wassers 25, 29
sphärische Gestalt 13
spindelförmige Gestalt 21, 24
Steiner-Oval 129—135
Stützmassen 143
Szielasko-Formeln, -Kurven, -Methode,
-Zahlen 21, 129—135
Tauchmethode 142, 147
Temperatur und Relatives Eigewicht 74
Theta (©) = excentrischer Winkel 142
Umfang (U und u) des Eies 111—116
Umwelt und Relatives Eigewicht 144
Umweltschäden an der Eischale 145 — 146
V = Volumen 24—25, 27, 94, 100
Verbreitung der Art und Eigröße 11
— — — und Eigestalt 11
Verdecktbrüter, s. auch Höhlenbrüter 63—68
Verdünnung der Schalen 145 — 146
V; = Volumen des Eiinhalts * 27, 142
V,= Volumen der Eischale 27, 42
walzenförmige, walzige Eigestalt 12—13,
15—16, 21, 24
Wassermethode, siehe auch Tauchmethode 25,
27 —29, 142
Wiegen der Schale 37—44
Zweispitz
Zwergeier
12, 14, 15, 20, 24—26, 140
16—19, 95—101
159
Register der wissenschaftliehen und der deutschen Tiernamen
aalge, Uria 26, 41 Agriocharis ocellata 78
Abessinischer Hornrabe 55 alai, Fulica 56
abnormis, Sasia 46, 51 Alauda 92, 118
abyssinicus, Bucorvus 55 — arvensis 36, 102, 108
acaciae, Turdoides 40 — — arvensis 19
Acanthis cannabina 103, 123, 127 Alaudidae 22, 65, 70
— — cannabina 55 alba, Guara S4
— flavirostris 77 — , Mctacilla 10, 36, 57, 103
Aceipiter 14 —, Tyto 23, 57, 146
— gentilis 10, 11, 87, 92, 122, 124, 126, 146 Albatros(se) 15, 23
— nisus 10, 58, 78, 92, 100, 146 albescens, Rhea 63, 102, 121
Aceipitridae 22, 23, 63, 70 albifrons, Anser 34
Aceros 55 — , Sterna 17, 56, 62, S6
Acrocephalus 93 albiventer, Phalarocrorax 86
— arundinaceus 36, 102, 106, 108 albociliatus, Phalacrocorax 33
— palustris 36, 103 albogularis, Anas 71
— seirpaceus 57, 62, 103 Alca 57, 129, 130, 140
Actinodura 118 — torda 35, 36, 119
Actitis hypoleucos 71, 76, 103 Alcedinidae 11, 12, 14, 16, 54, 65, 69, 70, 75, 118
— macularia 86 Alcedo 23, 55, 92
Actophilornis africana 34, 50 — atthis ispida 36, 52, 75, 87
adamsi, Gavia 47 alehata, Pterocles 121, 125, 126
Adler 136 Alcidae 15, 22, 23, 65, 70, 76, 117, 118
Aechmophorus major 26, 84, 56 Alectoris 44
Aegintha 15 — barbara 85
Aegithalidae 16, 66, 70 — graeca 76
Aegithalos 15 — — magna 48
— ceaudatus 36, 55, 103 — rufa laubmanni 44
— — caudatus 39 ö — — rufa 44
— — europaeus 76 Alectura 72— 74
Aegolius funereus 86 — lathami 72, 78, 97
Aegotheles 43, 45, 50, 54, 57, S0, 118 Alexandersittich 78
— ceristatus 55, 102 alexandrinus, Charadrius 86, 103
— — leucogaster 46 Alk(en) 15, 23, 75, 76
Aegypius 75, 78 alle, Plautus 62
— monachus 85, 102 Allenia 45
aegyptius, Caprimulgus 50 Alopochen 79
aeneus, Molothrus 102, 104 alpina, Erolia 40, 73, 103
Aepyornis 39, 40, 43, 44, 46, 81, 102, 105, 110, altaicus, Tetraogallus 56
114, 117, 119, 139 altirostris, Galerida 41
— spee. 114, 121 aluco, Strix 36, 56, 77, 79, 89, 146
— titan 27, 29, 33 Amandava subflava 99
Aepyornithidae 88 Amazona aestiva 71
aequinoctialis, Procellaria 46 americana, Chlorocephala 16
aereus, Ceuthmochares 53 —, Fulica 56
aeruginosus, Circus 87, 146 — , Rhea 46, 63, 73, 102, 121, 145
aestiva, Amazona 71 americanus, Coccyzus 104
afer, Pternistis 45 — , Grus 130
afra, Pytilia 54 Amerika-Geier 23
africana, Actophilornis 34, 50 amherstiae, Chrysolophus 85
Agapornis cana 71 Ammomanes deserti isabellinus 41
— nigrigenis 71 Amsel 46
Agelaius phoeniceus 105, 148 anaethetus, Sterna 33, 35, 41, 69, 73, 77
— tricolor 119 Anaplectes 15
160
Anas 123
— albogularis 71
— crecca 47, 61, 85, 92
— eyanoptera 85
— discors 85
— fulvigula 85
— platyrhynchos 17, 19, 35, 61, 79, 87, 92,
100, 122, 126
— — platyrhynchos 52
— — domestica 19
— querquedula 85
Anatidae 15, 17, 22, 23, 31, 47, 63, 68, 70, 71,
79, 88, 94, 118, 143, 144
Anatiden 78, 79, 148
anderssoni, Struthio 102, 118
Anhimidae 63, 70
Anhinga 12, 15
— anhinga 63
anhinga, Anhinga 63
Anhingidae 63, 70
Ani 22, 24
ani, Crotophaga 15, 22, 24, 87, 104
Anomalospiza 54
Anous stolidus 147
Anser 15
— albifrons 34
— anser 29, 35, 79, 84, 128
— — anser 39
— — domesticus 19, 84, 99
— ceygnoides 148
— erythropus 72, 97
— fabalis 71
anser, Änser 19, 29, 35, 39, 79, 84. 99, 128
Anseres 60, 61
Anseriformes 143
Anthochaera carunculata 55
Anthropoides paradisaea 78
Anthus 93
— pratensis 103
— trivialis 102
antigone, Grus 85, 87
antillarum, Sterna 85
antiquorum, Phoenicopterus 43, 84
Anumbius 54
apiaster, Merops 55, 102
Apodidae 12, 13, 15, 22, 22/23, 47, 54, 65, 118
apricaria, Pluvialis 89, 103
Aptenodytes 11, 14—16, 129
— forsteri 32, 33, 68, 69, 73—76, 128
— patagonica 24, 32, 114, 132, 135, 140
Apterygidae 12, 60, 63, 70, 88
Apteryx 16, 22, 24, 34, 44, 61, 68, 69, 75, 80,
88, 118, 138, 139
— australis mantellii 74, 102, 121
— owenii 46
Apus 92
— apus 36, 47, 59, 75
Apus melba 47
apus, Apus 36, 47, 59, 75
aquaticus, Rallus 76
Aquila 14, 78, 92, 136
— chrysaetos 35, 46, 122—124, 126
— pomarina 72, 97
Ara 55, 78
— ararauna 69, 71
— militaris 55, 56
Aramus 118
— guarauna 87
ararauna, Ara 69, 71
arctica, Fratercula 62
— , Gavia 34, 47
Ardea 92, 130
— cinerea 35, 52, 72, 87, 96
— — cinerea 52
— cocoi 34
— goliath 41
— herodias 84, 87
— purpurea 87
— sumatrana sumatrana 56
Ardeidae 22, 24, 63, 70, 88, 118
ardeola, Dromas 55
Ardeola ralloides 87
argentatus, Larus 17, 35, 50, 52, 55, 62, 86, 92,
95, 98
Argusianus 23
arquata, Numenius 35, 46, 47, 62, 71, 102, 103
Arremonops chloronotus 105
-- rufivirgatus 105
Artamidae 67, 70
arundinaceus, Acrocephalus 36, 102, 106, 108
arvensis, Alauda 19, 36, 102, 108
asiae, Francolinus 60
asiaticus, Caprimulgus 50
Asıo 92
— flammeus 57
— — flammeus 56
— otus 36, 123
— — wilsonianus 122, 126
asio, Otus 122, 126
astrild, Estrilda 54, 105
ater, Molothrus 104, 106
ateralbus, Centropus 14, 56, 71, 104
Athene 42, 88, 91, 92
— noctua 13, 89
atra, Fulica 18, 35, 50, 52, 72, 75, 85, 87, 96
atrata, Chenopis 141
atratus, Cygnus 141
atricapilla, Heteronetta 53
—, Sylvia 19, 108
atricilla, Larus 86, 141
atrovirens, Psarocolius 105
Attagis 15
atthis, Alcedo 36, 52, 75, 87
audubonii, Icterus 105
Auerhuhn 57
auratus, Colaptes 51
—, Pieumnus 51
auritus, Crossoptilon 78
auritus, Phalacrocorax 33
Austernfischer 17
australis, Apteryx 34, 102, 121
—, Fulica 50
— , Struthio 29, 99
azteca, Cyanocitta 49
Babax 15
badius, Molothrus 53, 106
bakeri, Cuculus 48, 50, 53
Balearica 15, 78
bangsi, Cuculus 106
bankiva, Gallus 20, 76
Bankivahuhn 76
barbara, Alectoris 85
Barbatula 43
barbatus, Gypaetus 52, 76, 87
Bartgeier 57
Bartramia longicauda 47, 86
Bartvögel 54
basalıa, Chaleites 104
bassanus, Morus 63, 76
Batrachostomus 15, 57
— hodgsoni hodgsoni 34
— moniliger 34
beccarü, Gallicolumba 71
beecheii, Cissilopha 49
Belonopterus chilensis cayennensis 86, 112
bengalensis, Centropus 14, 104
bennetti, Casuarius 29, 121
bernicla, Branta 72, 97
biarmicus, Panurus 77
bicalcaratus, Francolinus 72, 97
biddulphi, Podoces 49
Bienenfresser 12, 14, 54
bifasciatus, Caprimulgus 50
Biziura lobata 47, 85
Bleßhuhn 75
Bombyeillidae 66, 70
bonapartei, Nothocercus 50
bonariensis, Molothrus 14, 102, 104—106, 118
bonasia, Tetrastes 61, 85
borin, Sylvia 18, 19, 36, 51, 87, 102, 108, 118
Botaurus stellaris 75
bottanensis, Pica 86
Brachschwalben 12
Brachvogel 24
Brachyramphus 15, 75
— craveri 41
— hypoleucus 41
Brahma 79
Brandente 17
Brandseeschwalbe 13, 17
11 Oologie 43. Lieferung
.161
Branta berniela 72, 97
— canadensis 78, 79
— leucopsis 41, 78
breweri, Spizella 105
bruijnii, Micropsitta 71
Bubo bubo 36, 46, 102
— virginianus 122
kubo, Bubo 36, 46, 102
Bucconidae 14, 54, 65, 70
Bucephala clangula 71, 72, 76, 98
Bucerotidae 48, 53, 54, 65, 70
Bucorvus abyssinicus 55
— cafer 48
Bündelnister 54
Burhinidae 12, 64, 70
Burhinus 15, 118
— oedicnemus 86
Bussard 75, 136, 140
Buteo 14, 23, 77, 88, 92, 116, 123, 136, 140
— buteo 18, 35, 75, 85, 87, 122, 126
— — buteo 39, 52, 55, 59
— lagopus 57
— rufinus 85
buteo, Buteo 18, 35, 39, 52, 55, 75, 85, 87, 89,
122, 126
Butreron capellei 71
Caccatua 16
Cacicus cela 105
Cacomantis variolosus macrocercus 53
cactorum, Trichopiceus 51
caerulea, Passerina 104
caeruleus, Parus 103
caesia, Sitta 36, 90
cafer, Bucorvus 48
Cairina 79
Cairinini 143
calandra, Emberiza 23, 102
Calandrella cinerea hungarica 141
Calcarius lapponicus 40
Calidris canutus 71
californiana, Geococcyx 104
calliope, Stellula 146
Caloenas 15
— nicobarica 72, 96
Calyptorhynchus 16
camelus, Struthio 29, 31, 34, 39, 43, 46, 52, 63,
86, 97, 99, 102, 120, 121, 148
Campephagidae 66, 70
cana, Agapornis 71
canadensis, Branta 78, 79
—, Grus 78
canagica, Philacte 85
canaria, Serinus 19, 79
canicaudus, Cardinalis 105
cannabina, Acanthis 55, 103, 123, 127
canorus, Cuculus 18, 20, 34, 35, 48, 50, 52, 53,
162
57, 61, 70, 72, 101, 102, 104, 106—108, 121, Casuarius bennetti hecki 29, 121
122, 137 Cathartes 15
cantator, Phylloscopus 19 Cathartidae 16, 23
canus, Larus 10, 17, 50, 92, 148 Catharus ustulatus swainsoni 71
—, Picus 51 Catoptrophorus semipalmatus 86
canutus, Calidris 71 caudatus, Aegithalos 36, 39, 55, 76, 103
Capella 92 cayennensis, Belonopterus 86, 112
— gallinago 35, 59, 77, 86, 103 cayennensis, Caprimulgus 50
— — gallinago 35 Cecropis 141
— media 103 — daurica striolata 12
capellei, Butreron 71 — senegalensis senegalensis 12
capensis, Daption 41 { cela, Cacicus 105
— , Zonotrichia 105 Centropus 53, 118
Capitonidae 54, 65, 70 — ateralbus 14, 71, 104
Caprimulgidae 24, 45, 50, 65, 118 — — ateralbus 56
Caprimulgiden 51 — bengalensis 14, 104
Caprimulgus 15, 50 — senegalensis 104
— aegyptius 50 — sinensis 14, 104
— asiaticus 50 Cepphus 92
— carolinensis 26, 50 — grylie 119
— cayennensis 50 Cercomela familiaris galtoni 106
— enarratus 50 Certhia 14, 93
— europaeus 36, 75, 102 — familiaris familiaris 19
— — europaeus 52 — — macrodactyla 108
— indieus 11 Certhiidae 66, 70
— inornatus 50 cerviniceps, Eurostopodus 51
— longirostris bifasciatus 50 Ceryle rudis 16
— maculicaudus 50 — torquata 16
— madagascariensis madagascariensis 50 cetti, Cettia 73
— natalensis 50 Cettia cetti 73
— nigrescens 50 Ceutmochares aereus 53
— parvulus 50 Chalecites basalis 104
— ruficollis 50 — lucidus plagosus 59, 104
— rufigena 50 — maculatus 104
— vociferus 50 Charadriidae 15, 22, 48, 62, 64, 68, 70, 103, 118
caprius, Chrysococceyx 53 Charadriiformes 15
carbo, Phalacrocorax 34, 55, 69, 73 | Charadrius 17
—, Ramphocelus 105 — alexandrinus 86, 103
Cardinalis 88 — dubius euronicus 35, 103
— cardinalis canicaudus 105 — — jerdoni 48
cardinalis, Cardinalis 105 — hiaticula 103
Carduelis 93 Chauna 15, 118, 122
— carduelis 108 — torquata 63, 34
— chloris 36, 103 Cheniscus coromandelianus 47
— spinus 79 Chenopis atrata 141
carduelis, Carduelis 108 Chettusia gregaria 85
Cariama cristata 64, 78 chilensis, Belonopterus 86, 112
Cariamidae 64, 70 chinensis, Excalfactoria 56
carolinensis, Caprimulgus 26, 50 Chionididae 64, 70
Carpococcyx radiceus 53, 104 Chionis 15
carunculata, Anthochaera 55 chirurgus, Hydrophasianus 50, 114, 115
caryocatactes, Nucifraga 71 Chlamydotis 55
Casarca ferruginea 85 — undulata 55
caspisa, Hydroprogne 72, 96 Chlidonias nigra 86, 87, 100
castanotis, Poephila 73 Chloephaga picta 84
Casuariidae 63, 70 Chloris 93
Casuarius 15, 22, 74, 76, 78, 118 — chloris 93
chloris, Carduelis 36, 103
—, Chloris 36
—, Haleyon 23, 141
Chloroceryle americana 16
ehloronotus, Arremonops 105
ehloropus, Gallinula 35, 85, 87
Chondestes srammacus 105
Chordeiles pusillus pusillus 51
chrysaetos, Aquila 35, 46, 122—124, 126
Chrysococcyx caprius 53
— eupreus cupreus 53
Chrysocolaptes lueidus stricklandi 51
chrysocome, jetzt statt sclateri, Eudyptes 52
Chrysolophus amherstiae 85
— pietus 57, 72, 75, 85, 96
Chrysomma 15
Chrysoptilus punctigula 51
Ciconia 92
— ciconia 35, 87
— nigra 87
ceieonia, Ciconia 35, 87
Ciconiidae 15, 63, 71, 88, 118
Cinclidae 66, 70
Cinclus 88, 91, 93, 107
— cinclus cinclus 90
einelus, Cinclus 90
cinerea, Ardea 35, 52, 72, 87, 96
— , Calandrella 141
Circaetus 14, 43, 57
— gallicus gallicus 34
Circus 15, 92
— aeruginosus 87, 146
— cyaneus 85
— pygargus 87, 146
eirlus, Emberiza 77
Cissa 55
Cissilopha beecheii 49
citrea, Protonotaria 14, 51
citrina, Zoothera 56
citrinella, Emberiza 23, 36, 39, 102, 118, 123, 126
Cladorhynchus 57
— leucocephalus 50
Clamator 53
— coromandus 14—16, 104
— glandarius 71, 104
Clangula hyemalis 40
elangula, Bucephala 71, 72, 76, 96
clarkei, Turdus 122
Climacteridae 15
Coccothraustes 55, 73, 93, 107
— coccothraustes 52, 75, 100
— — coccothraustes 19, 52, 55
coceothraustes, Coccothraustes 19, 52, 55, 75,
100
Coceyzus 118
— americanus 104
-- erythrophthalmus 104
Br
163
Coceyzus minor maynardi 104
cocoi, Ardea 34
coelebs, ringilla 36, 52, 122—124
Coereba 118
Colaptes 51
— auratus luteus 51
colehicus, Phasianus 19, 57, 73, 85, 87, 122,
123, 126, 141
Colibri coruscans 46
Coliidae 65, 70
Colinus 11, 15, 78, 129
— virginianus 76
— — virginianus 56, 85
Colius 118
— colius 73
colius, Colius 73
collaris, Prunella 43
Collocalia 15
— fuciphaga natunae 47
collurio, Lanius 36, 87, 102, 108, 117, 118
collybita, Phylloscopus 36, 76, 99
Coloeus 44
Columba 55, 88, 92
— livia 56, 75
— — domestica 29
— oenas 62
— — oenas 89
— palumbus 62, 73, 146
— — palumbus 146
— rupestris 86
Columbae 6
Columbidae 12, 15, 22, 31, 55, 65, 70, 71, 76,
78, 79, 118
Columbitormes 60
Columbina picui 62, 73
Colymbidae 22—24, 63, 71
Colymbiformes 60
Colymbus 15, 75, 118, 130
— cristatus 35, 61, 84, 96
— — cristatus 52
— grisegena 61, 72, 84, 96
— nigricollis 61
— oceipitalis 84, 86
Coracias garrulus 55
Coraciidae 50, 54, 65, 70
communis, Sylvia 19, 51, 52, 57, 103, 108, 123,
127
concreta, Haleyon 141
conspicillata, Pelecanus 84
coqui, Francolinus 46, 128
corax, Corvus 49, 51, 62, 69, 71—73, 96
coromanda, Halcyon 141
coromandelianus, Cheniscus 47
coromandelica, Coturnix 55
coromandus, Clamator 14, 16, 104
coronata, Paroaria 105
coronatus, Spizaetus 78
164
corone, Corvus 10, 36, 39, 51, 52, 71, 73, 86,
37, 91. 118, 123, 126
coruscans, Colibri 46
Corvidae 22, 23, 49, 67, 70, 71, 118
Corvus 42, 44, 51, 88, 93
— corax 62, 69, 71—73, 96
— — corax 51
— — principalis 49
— — tibetanus 51
— — tingitanus 51
— corone 10, 36, 71, 73,
126
— — corone 39, 51, 52, 91
— ceryptoleucus 49
— frugilegus 18, 51, 57
— macrorhynchos levaillantii 49
— ruficollis edithae 51
— splendens 5i
Cotingidae 65, 70
Coturnix coromandelica 55
— coturnix 76, 77
— — coturnix 34
— delegorguei 76, 77
coturnix, Coturnix 34, 76, 77
Cracidae 44, 65, 70
Cracticidae 67, 90
cranchii, Pternistis 45
craveri, Brachyramphus 41
Crax 15, 57, 78
Creatophora 43
crecca, Anas 47, 61, 85, 92
Crex 76, 87
— crex 76, 87
crex, Crex 76, 87
crispus, Pelecanus 84
cristata, Cariama 64, 78
— , Galerida 19, 36, 41, 108
— , Goura 34, 62, 76
— , Gubernatrix 105
cristatus, Aegotheles 46, 55, 102
—, Colymbus 35, 52, 61, 84, 86
—, Pavo 79
— , Podiceps 35, 52, 61, 84, 86
Crossoptilon auritum 78
Crotophaga 16, 113
= 'anı 15, 22, 24,'87,1104
— major 14, 69, 71, 104
— suleirostris 53, 104
eryptoleucus, Corvus 49
Crypturellus tataupa inops 50
— undulatus 14, 16
Cuculidae 16, 43, 65, 70, 75, 104, 105
Cuculiden 52, 53
Cuculiformes 60, 61
cucullatus, Icterus 105
—, Lophodytes 43, 47, 55
Cuculus 34, 101, 105— 107, 117, 118
86, 87, 118, 123,
Cuculus canorus 18, 35, 52, 61, 70, 101, 102,
104, 107, 108, 122, 137, 139
— — bakeri 48, 50, 53
— — bangsi 106
— — canorus 20, 34, 50, 53, 106, 121
— fugax hyperythrus 50, 53, 104
— — nisicolor 50, 53, 104
— poliocephalus rochii 104
— varius 104
cunicularis, Speotyto 56
cupreus, Chrysococcyx 53
curonicus, Charadrius 35, 103
curruca, Sylvia 18, 51, 103, 122
Cursorius temminckii 14
cyaneus, Circus 85
Cyanocitta stelleri azteca 49
cyanoptera, Anas 85
ceygnoides, Anser 148
— , Cygnopsis 148
Cygnopsis 79, 148
— cygnoides 148
Cygnus 15, 92, 119
— atratus 141
— melanocoryphus 47, 84
— olor 18, 29, 35, 39, 46, 52, 75, 84, 87, 102
Cypsiurus parvus myochrous 47
Dacelo 16
Daption capensis 41
daurica, Cecropis 12
decumanus, Psarocolius 105
delegorguei, Coturnix 76, 77
Delichon 15, 88, 91, 93
— urbica urbica 90
deltae, Prinia 40
demersus, Spheniscus 119
Dendrocolaptidae 65, 70
Dendrocopos 51, 91
— kizuki nigrescens 51
— major 36, 62, 92, 95
— — pinetorum 18
— medius 59, 62
— medius 59, 62
— minor 62, 92
— — hortorum 90, 102
Dendrocygna 55
— javanica 55
Dendronessa galericulata 76, 85, 87
Dendrortyx 23
deserti, Ammomanes 41
Dicaeidae 66, 70
Dicaeum eximium 15
Dickfüße 12
Dieruridae 67, 70
Dinornis 81, 114, 117, 118
— spec. 102
Diomedea 15, 23, 118
— exulans 46, 62, 63, 73, 74, S6, 102, 121
Diomedeidae 15, 63, 70
discors, Anas 85
Diuca diuca 105
diuca, Diuca 105
Dohle 46
domestica, Anas 19
— , Columba 29
domesticeus, Anser 19, 84, 99
—, Gallus 10, 13—15, 19,
119, 121, 122, 124, 126, 128, 141
— , Passer 18, 36, 52, 102, 108, 118, 148
dominica, Pluvialis 73
donaldsoni, Caprimulgus 50
dorbignianus, Picumnus 51
Dromadidae 64, 70
Dromas 15, 55, 57
— ardeola 55
Dromiceiidae 63, 70
Dromeeius 69, 74, 78, 118
— novaehollandiae 121
Drosseln 23, 53
Drycocopus martius 26, 36, 43, 62, 69
dubius, Charadrius 35, 48, 103
edithae, Corvus 51
Eiderente 17
Eisvogel, Eisvögel 12, 14, 54, 75
Elaenia flavogaster 104
Elanus 14
— scriptus 34
elegans, Eudromia 76
—, Rallus 85
Elseyornis melanops 48
Emberiza 15, 93
— calandra 23, 102
— eirlus 77
— eitrinella 23, 36, 102, 118, 123, 126
— — citrinella 39
— hortulana 108
— schoeniclus 77
Emberizidae 66, 70, 118, 144
Emberiziden 144
Embernasra platensis 105
Emu 61, 74, 78
enarratus, Caprimulgus 50
Ente(n) 14—-17, 23, 31, 76, 78, 79, 94
eremita, Megapodius 69, 96
Ereunetes pusillus 62
Erithacus rubecula 15, 36, 56, 71, 102, 108,
123, 127, 148
— — melophilus 106
erithacus, Psittacus 78
Erolia 24
20, 23, 25, 27, 29,
34, 38, 43, 52, 58, 68, 72, 74, 76, 79, 84,
85, 87, 91, 95, 96, 98—100, 103, 111, 118,
165
Erolia alpina 103
— — pacifica 40
— sakhalina 40
— — schinzii 73
— ferruginea 62
— fuscicollis 40
— minuta 47
— minutilla 68, 69, 71, 73
— temminckii 47, 56, 103
lee Melanerpes 18
erythrogaster, Hirundo 119, 120
erythrophthalmus, Coccyzus 104
erythropus, Anser 72, 97
erythrorhynchus, Tockus 48
Estrilda astrild 54, 105
— melpoda 73
Estrildidae 67, 70
Eudromia elesans 76
Eudromias 57
— morinellus 34, 45, 46, 48, 103
Eudynamys 53
— scolopacea 71, 104
Eudyptes sclateri (jetzt wieder chrysocome) 52
Eulabeia indica 85
Eule(n) 12, 14, 16, 23, 24, 31
Eumomota 55
eunomus, Turdus 56
eupatria, Psittacula 78
Euplectes 43, 80
— orix 102, 118
— — orix 46
Eupoda 16
— montana 15
Eupodotis humilis 14
europaea, Sitta 36, 90
europaeus, Aegithalos 76
— , Caprimulgus 36, 52, 75, 102
Eurostopodus guttatus 43
— macrotis cerviniceps 51
Eurylaimidae 118
Eurypyga 14, 118
— helias 46
Eurystomus orientalis orientalis 50
Euxenura maguari 84
exarhatus, Penelopides 48
Excalfactoria 78
-—— chinensis chinensis 56
excubitor, Lanius 36
eximium, Dicaeum 15
exulans, Diomedea 46, 62, 63, 73, 74, 86, 102, 121
fabalıs, Anser 71
faleinellus, Plegadis 34, 87
Falco 14, 55, 123
— femoralis 146
— jugger 85
— peregrinus 35, 46, 92, 146
166 x
Falco peregrinus macropus 146 fuciphaga, Collocalia 47
— rufogularis 146 fugax, Cuculus 50, 53, 104
— sparverius 122, 126 Fulica 50, 88
— — sparverius 35 — americana alai 56
— tinnunculus 18, 35, 85, 92, 98, 122, 123, 126 -—- atra 18, 35, 52, 72, 75, 85, 37, 89, 92, 96, 98,
— vespertinus 141 99
Falconidae 22, 23, 63, 70, 88 — — australis 50
Faleoniformes 11, 12, 14, 16, 23, 48, 60, 61, — gigantea 50
94, 118 fulicarius, Phalaropus 40
familiaris, Cercomela 71 Fulmarus 73, 74
— , Certhia 19, 108 — glacialis 62, 63
Fasan(en) 14, 17, 69, 76 fulvigula, Anas 85
fasciatus, Tockus 48 fulvus, Gyps 43, 76, 85, 87, 119
Faulvögel 54 — , Turdoides 40
Felsentaube 75 funerea, Hypochera 54
femoralis, Falco 146 — , Vidua 54
ferina, Nyroca 85 funereus, Aegolius 86
ferruginea, Casarca 85 Furnariidae 65, 70
—, Erolia 62 fuscata, Sterna 33, 147
Ficedula hypoleuca 108
— — hypoleuca 19
Finkenvögel 144
fischeri, Francolinus 45
fuscicollis, Erolia 40
Zuscus, Larus 50
Flamingo 14, 23, 24, 43 Gänse 15, 17, 78, 79, 94, 128
flammeus, Asio 56, 57 Galbula 55
flava, Motacilla 10, 41, 103 — ruficauda rufoviridis 55
flaveola, Sicalis 105 Galbulidae 12, 14, 54, 65, 70
flavipes, Platibis 84 galeata, Gallinula 85
flavirostris, Acanthis 77 —, Numida 20, 72, 97
flavogaster, Elaenia 104 galericulata, Dendronessa 76, 85, 87
Fliegenschnäpper 53 Galerida 92, 107
Flughühner 24 — cristata 36, 108
fluviatilis, Locustella 141 — — altirostris 41
Fluvicola pica 104 — — cristata 19
Formicariidae 65, 70 — — maculata 41
forsteri, Aptenodytes 32, 33, 68, 69, 73— 76,128 Galli 61
Francolinus 15, 44, 45, 50, 57, 86, 138 Gallicolumba beccarii 71
— bicalcaratus 72, 97 gallicus, Circaetus 34
— francolinus 60 Galliformes 9, 12, 31, 44, 60
— hildebrandti fischeri 45 gallinacea, Irediparra 34
— — grotei 45 gallinago, Capella 35, 59, 77, 86, 103
— pietus pictus 34 Gallinula 92
— pintadeanus phayrei 34 — chloropus 35, 87
— sephaena coqui 46, 128 — — galeata 85
— — grantii 45, 102, 121 Gallus 17, 24, 98, 117, 148
francolinus, Francolinus 60 — gallus bankiva 20, 76
Frankoline 45 — — domesticus 10, 13—15, 20, 23, 25, 27, 29,
Fratercula arctica 62 34, 38, 43, 52, 58, 68, 72, 74, 76, 79, 85, 87,
Fregata 118 95, 96, 98, 100, 103, 111, 118, 119, 121, 122,
Fregetta tropica melanogaster 32, 41 124, 126, 128, 141, 148
freycinet, Megapodius 110 gallus, Gallus, wie vorige Gallus gallus
Fringilla 93, 123 domesticus
— coelebs 36, 52, 122, 123, 127 galtoni, Cercomela 71
— — coelebs 52 gambensis, Plectropterus 71
— montifringilla 77, 102 garrulus, Coracias 55
Fringillidae 22, 67, 70, 118, 143, 144 Garrulus glandarius 18, 36, 87
frugilegus, Corvus 18, 51, 57 Gauch 107
Gavia 11, 15, 92, 118
— adamsii 47
— aretica 34
— — aretica 47
— — pacifica 47
— immer 47, 102
— stellata 13, 47, 72, 84, 97
Gaviidae 12, 22, 23, 47, 63, 70, 76
Geier 57
— , Amerika- 23
Gonnaeus lineatus sharpei 69
gentilis, Aceipiter 10, 11, 37, 92, 122, 124, 126,
146
Geococcyx californiana 104
Geospiza 144
gibraltariensis, Phoenicurus 19, 46, 108
gigantea, Fulica 50
giganteus, Macronectes 34
gigas, Patagona 110
glacialis, Fulmarus 62, 63
glandarius, Clamator 71, 104
— , Garrulus 18, 36, 87
Glanzvögel 54
Glareola 15
Glareolidae 12, 64, 70
Glaueidium passerinum 79
Glaueis hirsuta 13
goertae, Mesopicus 51
Goldammer 23
Goldfasan 57, 75
Goldhähnchen 18, 48, 76
Goura 15
— cristata 62, 76
— — cristata 34
gracilis, Piaya 53
—, Prinia 40
Gracula religiosa intermedia 49
graduacauda, Icterus 105
graeca, Alectoris 48, 76
Grallinidae 67, 70
grammacus, Chondestes 105
granti, Francolinus 45, 102, 121
Grasmücken 23, 53
Grauammer 23
Grauschnäpper 119
gregaria, Chettusia 85
Greifvogel, Greifvögel 12, 14, 23, 48, 94, 143,145
grisegena, Colymbus 61, 72, 84, 96
— , Podiceps 61, 72, 84, 96
Großer Alexandersittich 78
Großfußhuhn, Großfußhühner 12, 63
grotei, Francolinus 45
Gruidae 64, 70, 76, 78, 118
Grus 15, 92, 117
— americanus 130
— antigone 85, 87
— canadensis 78
167
Grus grus 112
— rubicunda 85
grus, Grus 112
grylle, Cepphus 119
Gryliteiste 119
sryphus, Vultur 23, 78, 115
Guara alba 84
guarauna, Aramus 87
Gubernatrix cristata 105
Guira 15
— guira 71, 76, 104
guira, Guira 71, 76, 104
guirahuro, Pseudoleistes 106
Guirakuckuck 76
gularis, Icterus 13
guttata, Poephila 78
guttatus, Eurostopodus 43
Gygis 15, 16
Gymnosyps 15
Gypaetus 14, 57, 75
— barbatus 76, 87
— — barbatus 52
Gyps 15, 43, 75
— fulvus 76, 85, 87, 119
— — fulvus 43
Habicht 11
Haematopodidae 64, 70
Haematopus 15, 17, 92, 113
— ostralegus 72, 96
— — palliatus 85
Haleyon 23, 141
— chloris 23, 141
— concreta 141
— coromanda 141
— pileata 141
— princeps 16
— smyrnensis 77
— — smyrnensis 35
Haliaeetus 43
haliaetus, Pandion 72, 96
Harlekinwachtel 76
Harpactes 14, 16
Haubensteißhuhn 76
Hausente 79
Hausgeflügel 16, 56, 79
Haushuhn 9, 10, 13, 15, 23, 25, 27, 29, 34, 38,
43, 53, 58, 68, 74—76, 79, 95, 96, 98, 103,
111, 119—122, 124, 138, 140, 141
—, Philippinen- 121
—, Wyandotte 76
Hausrotschwanz 46
Haustaube 29
hecki, Casuarius 29, 121
helias, Eurypyga 46
Hemiprocne 15, 57
— mystacea 75
168
Hemiprocnidae 65, 70
hemprichii, Larus 86
herodias, Ardea 84, 87
Heteronetta atricapilla 53
hiatieula, Charadrius 103
hildebrandti, Francolinus 45
impennis, Pinguinus 43, 87, 130
indica, Eulabeia 85
— , Sypheotides 14
Indicator indicator 53, 104
— minor 53
indieator, Indicator 53, 104
hirsuta, Glaucis 13 Indicatoridae 65, 70
Hirundinidae 54, 65, 70, 143, 144 indicus, Caprimulgus 11
Hirundo 118 innominatus, Picumnus 46, 51
— rustica 36 inops, Crypturellus 50
— — erythrogaster 119. 120 inornatus, Caprimulgus 50
— —- rustiea 54 insolitus, Ptilinopus 71
hirundo, Sterna 17, 35, 52, 56, 87, 99 intercedens, Nothocercus 50
Histrionieus histrionicus 47 intermedia, Gracula 49
histrionieus, Histrionicus 47 — ,Jacana 34
hodgsoni, Batrachostomus 34 Irediparra gallinacea gallinacea 34
Höckerschwan 46 Irenidae 66, 70
hollandieus, Nymphieus 34, 71, 77 isabellinus, Ammomanes 41
Honiganzeiger 53 ispida, Alcedo 36, 52, 75, 87
Hornrabe 55 Ispidina 14
hortensis, Sylvia 102, 106 Ixobrychus 92
hortorum, Dendrocygna 90, 102 — sturmi 55
hortulana, Emberiza 108
Hühner, Huhn 14, 17, 24, 31, 69, 78, 95, 121
Hühnervögel 12, 44, 94 Jacana spinosa intermedia 34
Huhn, Sulmtaler 76 — — jacana 34
humboldtii, Pternistis 45 LE". 34
humilis, Eupodotis 14 jacana, Jacana 34
—, Pseudopodoces 49 Jacanidae 34, 50, 64, 70
—, Streptopelia 71 Jacaniden 16 Ben
hungarica, Calandrella 141 Jagdfasan(en) 57, 79
Hydrobates 15 An 2 :
Hydrobatidae 63, 70 jamesoni, Lagonosticta 54
Hydrophasianus 11, 15, 16, 22, 121 javanica, Dendrocygna 55
— chirargus 45, 50, 114 jerdoni, Charadrius 48
Hydroprogne caspia 72, 96 jubatus, Rhynochetus 46
hyemalis, Clangula 40 jugger, Falco 85
hyperythrus, Cuculus 50, 53, 104 Jynx 90, 32
Hypochera funerea 54 mn ran 105
hypoleuca, Ficedula 19, 108 ee
hypoleucos, Actitis 71, 76, 103
hypoleucus, Brachyramphus 41 Kaiserpinguin 33
Kanarien, Kanarienvogel 19, 79
Ibidorhynchus struthersii 50, 87 Kasuar 22, 74, 76, 78
Ibis ibis 78 Kernbeißer 75
ibis, Ibis 78 Kiebitz(e) 12, 16, 24, 56
ichthyaetus, Larus 43, 119 Kiwi(s) 15, 22, 24, 34, 68, 75, 138
Ieteria 15 kizuki, Dendrocopos 51
Icteridae 54, 67, 70, 105 Kochin 79
Icteriden 14, 53 Königspinguin 24, 135, 140
Ieterus cucullatus sennetti 105 Kohlmeise 77
— graduacauda audubonii 105 Koj;bri(s) 10, 13—15, 18, 22, 24, 27, 33, 34, 43,
— gularis 13 44, 46, 55, 61, 75, 88, 105, 139
ignicapillus, Regulus 103 Kondor 23, 78
iliacus, Turdus 71 Kormoran(e) 12, 22, 24
immer, Gavia 47, 102 krameri, Psittacula 56
impacifa, Scaphidura 53 Kraniche 76
Kuckuck(e) 14, 16, 18, 20, 34, 43, 52, 53. 70, 75,
101, 104, 108, 137
—, Tapera- 53
Kuckucksente 53
Kuckueksweber 54
Küstenseeschwalbe 75, 119
Lachmöwe 17
Lagonosticta rhodopareia jamesoni 54
Lagopus 76
— Jagopus 72, 96
— mutus rupestris 40
lagopus, Buteo 57
lagopus, Lagopus 72, 96
Laniidae 22, 66, 70
Lanius 93, 106, 107, 123
— collurio 36, S7, 102, 108, 117, 118
— exeubitor 36
— — ludovicianus 122, 123, 126
— minor 141
laperouse, Megapodius 49
lapponica, Strix 72, 96
lapponicus, Calcarius 40
Laridae 22, 24, 31, 60, 61, 64, 68, 70, 94, 118
Larinae 15, 16, 55
Larus 15, 50, 117, 123, 147
— argentatus 17, 35, 50, 52, 55, 62, S6, 92, 95,
98
— — argentatus 52
— — smithsonianus 40
— atrieilla 36, 141
— canus 10, 17, 50, 57, 92, 148
— fuscus 50
— hemprichii 86
— ichthyaetus 43, 119
— marinus 50, 62, 72, 97
— melanocephalus 86
— minutus 50, 62
— ridibundus 17, 35, 50, 56, 62, 99, 100, 122,
123, 126
lathami, Alectura 72, 78, 97
laubmanni, Alectoris 44
Laubsänger 54, 76
lecontei, Toxostoma 33
Legatus 54
Leghorn 79, 141
Leipoa ocellata 49
Lemming 57
Leptosoma 14
Ler wa. 23
leucocephala, Oxyura 76
leucocephalus, Cladorhynchus 50
leucogaster, Aegotheles 46
leucoparaeus, Pternistis 45
leucopsis, Branta 41, 78
leucopyga, Oenanthe 40
leucorodia, Platalea 72, 97
leucorrhoa, Oceanodroma 62, 63, 77
levaillantii, Corvus 75
limicola, Rallus 85
Limicolae 60, 61
Limosa 92
— limora 35, 62, 71, 86, 103
limosa, Limosa 35, 62, 71, S6, 103
lineatus, Gennaeus 69
livia, Columbia 29, 56, 75
lobata, Biziura 47, 85
lobatus, Lobipes 86
Lobipes lobatus 86
Locustella fluviatilis 141
Löffelreiher 22, 24
lomvia, Uria 62, 86, 112, 114
longicauda, Bartramia 47, 86
longirostris, Caprimulgus 50
Lophodytes 14, 80
— cucullatus 43, 47, 55
Lophophorus 23
Lophornis ornata 33, 103, 105
Lophortyx 15, 78
lophotes, Ocyphaps 71
Lophotis ruficrista 14
Lophura rufa 14
Lorius roratus pectoralis 78
lucidus, Chaleites 59, 104
— , Chrysocolaptes 51
ludovieianus, Lanius 122, 123, 126
Lummen 22—24
Luscinia megarhynchos 18, 71, 108
luteus, Colaptes 51
Lybius torquatus 104
Lymnocryptes 73
— minimus 35, 52, 71, 72, 97, 103, 121
Lyrurus tetrix 59, 61
Machetornis rixosus 104
Macrocephalon 16
— maleo 49
macrocercus, Cacomantis 53
macrodactyla, Certhia 108
Macronectes 15
— giganteus $4
Macronyx 15
macrorhynchos, Corvus 49
macrotis, Eurostopodus 51
macroura, Vidua 54, 104
macularia, Actitis S6
maculata, Galerida 41
maculatus, Chalcites 104
maculicaudus, Caprimulgus 50
madagascariensis, Caprimulgus 50
Mäuse 57
magna, Alectoris 48
maguari, Euxenura 84
169
170
major, Aechmophorus 26, 84, 86 urigrans, Milvus 85
—, Crotophaga 14, 69, 71, 104 migratorius, Turdus 148
— , Dendrocopos 18, 36, 62, 92, 99 militaris, Ara 55, 56
— , Parus 36, 76, 77, 143 Milvago 14
malabaricus, Sturnus 43, 49 Milvus 23, 116
maleo, Macrocephalon 49 — migrans 55
Malimbus 15 — milvus 78, 87
manillensis, Psittacula 56 milvus, Milvus 78, 87
mantelli, Apteryx 102, 121 Mimidae 66, 70, 117, 118
marila, Nyroca 35, 59, 85 Mimus polyglottos 119
marinus, Larus 50, 62, 72, 97 minima, Mellisuga 33, 73
martius, Dryocopus 26, 36, 43, 62, 69 minimus, Lymnocryptes 35, 52, 71, 72, 77, 103,
Mauersegler 75 121
maximiliani, Pitangus 104 — , Molothrus 104
maynardi, Coccyzus 104 minor, Cocceyzus 104
media, Capella 103 —, Dendrocopos 62, 90, 92, 102
medius, Dendrocopos 59, 62 — , Indicator 53
Megalaima 53 — , Lanius 141
Megapodiidae 12, 44, 49, 64, 68,69,70,74,78,88 zminuta, Erolia 47
Megapodius 24, 31, 68, 80, 117, 118 —, Piaya 53
— eremita 61, 72, 96 minutilla, Erolia 68, 69, 71. 73
— freycinet 110 minutus, Larus 50, 62
— leperouse 41 modestus, Thryothorus 103
— pritchardi 41 — , Zonibyx 34, 103
megarhynchos, Luseinia 18, 71, 108 modularis, Prunella 103, 106, 108, 123, 127
Meiglyptes tukki 51 Möwen 15, 16, 24, 31, 55, 94
Meise(n) 16, 22, 76 mollissima, Somateria 17. 34, 35, 71, 99
Melanerpes erythrocephalus 18 Molothrus 53
melanocephala, Sylvia 51, 106 — aeneus 102, 104
melanocephalus, Larus 86 — ater 104, 106
melanocoryphus, Cygnus 47, 84 — badius 53, 106
melanogaster, Fregetta 32, 41 — bonariensis 14, 106, 118
melanops, Elseyornis 48 — — bonariensis 104
— , Porphyriops 87 — — minimus 104
Megalopteryx 15 — — occidentalis 102, 105
melba, Apus 47 — rufoaxillaris 106
—, Pytilia 54 moluccensis, Trichoglossus 73
Meleagrididae 44, 64, 69, 70 Momotidae 14, 59, 65, 70
Meleagris 73, 79 monachus, Aegypius 85, 102
meleagris, Numida 20, 56, 72, 79, 97, 121 monedula, Corvus 46, 107
Meliphagidae 66, 70, 118 mongolicus, Phasianus 19
Melithreptus 55 moniliger, Batrachostomus 34
Mellisuga minima 33, 73 montana, Eupoda 15
melophilus, Erithacus 106 montanus, Passer 19, 102, 108
melpoda, Estrilda 73 Monticola saxatilis 19
Menura 15 Montifringilla 107
merganser, Mergus 71, 148 montifringilla, Fringilla 77, 102
Mergus merganser 71, 148 morinellus, Eudromias 34, 45, 46, 48, 103
Meropidae 12, 14, 54, 65, 70 Mornell 45
Merops 118 Morus 118
= apiaster 55, 102 — bassanus 63, 76
merula, Turdus 71, 99, 118, 122 Motacilla 118
Mesopicus goertae 51 — alba 10, 36, 103
meyeri, Ptilinopus 56, 77 — — alba 52
Microhierax 55 — flava 10, 103
Micropsitta brujnii 71 — — pygmaea 41
— pusio 55 Motacillidae 22, 66, 70
moussieri, Phoenicurus 106
Mulleripicus 51, 55
Musecicapa 93
— striata 119
Museicapidae 53, 66, 70
Musophagidae 12, 14, 65, 70
mutus, Lagopus 40
Myiophoneus 15, 55
myochrous, Cypsiurus 47
mystacea, Hemiprocne 75
nabouroup, Onychognathus 49
Nachtschwalbe(n) 24, 50, 51
naevia, Tapera 104
naevius, Asio 122, 126
—, Ramphodon 46, 55
Nandu 13, 46
nanus, Taoniscus 50
Nashornvogel 48, 54
natalensis, Caprimulgus 50
natunae, Collocalia 47
naumanni, Turdus 56
nebulosa, Strix 72, 96
Nectarinia osea 148
Nectariniidae 54, 66, 69, 70
nemoricola, Sturnus 43, 49
Neophron 15, 81
— percenopterus 87
Nestor 16
Neuweltgeier 16
newtoni, Parus 143
nicobarica, Caloenas 72, 96
nigra, Chlidonias 85— 87, 100
—, Ciconia 87
— , Oidemia 85
nigrescens, Caprimulgus 50
—, Dendrocopos 51
nigriceps, Tanysiptera 69
nigricollis, Colymbus 61
—, Podiceps 61
nigrigenis, Agapornis 71
nipalensis, Aceros 55
nisicolor, Cuculus 50, 53, 104
nisoria, Sylvia 51, 90, 102, 106, 108
nisus, Accipiter 10, 58, 78, 92, 100, 146
nivalis, Plectrophenax 40, 77
noctua, Athene 13, 89
Nonpasseriformes 59, 68
Nothocereus bonarpartei inteecedens 50
novaehollandiae, Dromiceius 121
—, Scythrops 53, 104
— , Trichoglossus 110
Nueifraga 45, 107
— caryocatactes 71
Numenius 23, 24, 83, 92
— arquata 35, 46, 47, 62, 71, 102, 103
— phaeopus 72, 96
171
Numida 15, 118
— meleagris 79, 121
— — galeata 20, 72, 97
— — meleagris 56
Numididae 44, 64, 70
Nyctanassa violacea 78
Nyctea 57
— sceandiaca 34, 52
Nyeticorax nycticorax 72, 84, 96, 119, 145
nycticorax, Nycticorax 72, 84, 96, 119, 145
Nymphicus 73
— hollandicus 34, 71, 77
Nyroca ferina 85
— marila 35, 59, 85
— nyroca 96
nyroca, Nyroca 96
obtusa, Vidua 54
occidentalis, Molothrus 102, 105
occipitalis, Colymbus 84, 86
—, Podiceps 84, 86
oceanicus, Oceanites 41
Oceanites oceanicus 41
Oceanodroma leucorrhoa 62, 63, 77
ocellata, Agriocharis 78
— , Leipoa 49
ochracea, Sasia 51
ochropus, Tringa 71, 73
ochruros, Phoenicurus 19, 46, 108
Ocyphaps lophotes 71
oedienemus, Burhinus 86
Oenanthe 55
— leucopyga leucopyga 40
— oenanthe 71, 108
— pileata 43
oenanthe, Oenanthe 71, 108
oenas, Columba 62, 89
Oidemia nigra 85
olor, Cygnus 18, 29, 35, 39, 46, 52, 75, 84, 87,
102
onocrotalus, Pelecanus 63, 73, 76
Onychognathus nabouroup nabouroup 49
Oreortyx pieta pieta 33
orientalis, Eurystomus 50
—, Vidua 54
Oriolidae 67, 70
Oriolus 93, 118
— oriolus 36
oriolus, Oriolus 36
orix, Euplectes 46, 102, 118
ornata, Lophornis 33, 103, 105
Orthorhamphus 57
Ortygonax rytirhynchos 87
oryzivora, Scaphiduta 53, 104, 107
Oscines 14, 60, 61, 68
osea, Nectarinia 148
ostralegus, Haematopus 72, 85, 96
172
Otididae 14, 48, 60, 61, 64, 68, 70, 76
Otidiphaps 15
ÖOtis 118
— Tarda 35
— tetrax tetrax 52
Otus 123
— asio 36
— — naevius 122, 126
— — quercinus 122, 123
— scops 77, 102
— — scops 35
otus, Asio 36, 122, 123, 126
owenii, Apteryx 46
Oxyura leucocephala 76
Oxyurini 143
pacifica, Erolia 40
— , Gavia 47
palliatus, Haematopus 85
palumbus, Columba 62, 73, 146
palustris, Acrocephalus 36, 103
— , Parus 18, 36
Pandion haliaetus 72, 96
Panurus biarmicus 77
Papageien 14, 16, 23, 24, 31, 54, 78
papua, Pygoscelis 14, 52, 121
paradisaea, Steganura 54
— , Sterna 17, 40, 75, 119
—, Vidua 54
Paradisaeidae 67, 70
paradisea, Anthropoides 78
paradoxus, Syrrhaptes 27
parasiticus, Stercorarius 59
Paridae 16, 22, 66, 69, 70, 76
Paroaria coronata 105
Parulidae 51, 66, 70
Parus 14, 77, 118
— caeruleus 103
— major 36, 76, 77
— — major 143
— — newtoni 143
— palustris 18, 36
parva, Porzana 35
parvulus, Caprimulgus 50
parvus, Cypsiurus 47
Passer 46, 91, 93, 106, 107
— domesticus 18, 36, 102, 108, 118
— — domesticus 52, 91
— montanus 102, 108
— — montanus 19
Passeriformes 11, 12, 14, 17, 31, 51, 59, 68, 84,
94, 118, 143, 148
Passerina caerulea 104
passerinum, Glaucidium 79
Patagona gigas 110
patagonica, Aptenodytes 24, 32, 114, 132, 135,
146
Pavo 15
Pavo cristatus 79
pectoralis, Lorius 78
Pedioecetes phasianellus 85
Pelecanidae 22, 63, 70, 76, 88
Pelecanus 12, 15, 69, 75, 76, 87, 118
— conspicillatus 84
— crispus 84
— onocrotalus 63, 76
Pelikan(e) 12, 69, 75, 76
pendulinus, Remiz 111
Penelope 57
Penelopides exarhatus 48
perenopterus, Neophron 87
Perdix 15, 24, 76, 92
— perdix 11, 18, 35, 68, 69, 85, 87, 98
— — perdix 52, 56
perdix, Perdix 11,18, 35, 52, 56, 68, 69, 85, 87,983
peregrinus, Falco 35, 46, 92, 146
Perlhuhn 79
Pernis 14
Petrochelidon pyrrhonotus 148
Petronia petronia 18
petronia, Petronia 18
Pfau 79
Pfefferfresser 54
Phacellodomus 54
phaeopus, Numenius 72, 96
Phaethon 118
Phaethornis ruber 27, 33, 72, 97
Phalacrocoracidae 22, 24, 63, 70
Phalacrocorax 12, 15, 55, 57, 87, 118
— albiventer 86
— auritus albociliatus 33
— carbo 55, 69, 73
— — carbo 34 >
Phalaropodidae 15, 64, 70
Phalaropus 74, 118
— fulicarius 40
Pharomachrus 14, 16, 22
phasianellus, Pedioecetes 85
Phasianidae 22, 23, 44, 67— 70, 118, 144
Phasianiden 23, 78
Phasianus 17, 23, 76, 79, 92
— colchicus 35,57, 73, 85,87, 122, 123, 126, 141
— — mongolieus 19
phayrei, Francolinus 34
Philacte canagica 85
Philippinen-Haushühner 121
Philomachus pugnax 35, 47, 59, 72, 97, 102,
103, 121
philomelos, Turdus 36, 102, 122, 123, 126
phoeniceus, Agelaius 105, 148
Phoenicopteridae 12, 24
Phoenicopterus 14, 15, 23, 87, 118
— antiquorum 43, 34
— ruber 84
Phoenicurus 55, 93
Phoenicurus moussieri 106
— ochruros gibraltariensis 19, 46, 108
— phoenieurus 103, 108, 123, 127
— — phoenicurus 19
phoenieurus, Phoenicurus 19, 103, 108, 123, 127
Phylloscopus 14, 54, 70, 93
— cantator 19
— collybita 36, 76, 99
Pjaya minuta gracilis 53
Pica 45, 93, 107
— pica 36, 71, 100
— — bottanensis 86
— — pica 52, 73
pica, Fluvicola 104
—, Pica 36, 52, 71, 73, 86, 106
Picidae 22, 45, 48, 51, 54, 65, 69, 70, 118
picta, Chloephaga 84
—, Oreortyx 33
pictus, Chrysolophus 57, 72, 75, 35, 96
—, Franeolinus 34
picui, Columbina 62, 73
Pieumnus 51
— auratus dorbignianus 51
— innominatus innominatus 46, 51
— temminckii 55
Pieus 117
— canus tancolo 51
— viridis 102
— — viridis 52
— xanthopygaeus 51
pilaris, Turdus 34, 77
pileata, Haleyon 141
—, Oenanthe 43
pineterum, Dendrocopos 18
Pinguine 16, 33
Pinguinus impennis 43, 87, 130
pintadeanus, Francolinus 34
Pipridae 65, 70
Pitangus sulphuratus maximiliani 104
Pitta 14, 118
Pittidae 65, 70
plagosus, Chaleites 59, 104
Platalea 15, 23, 92
— leucorodia 72, 97
Plataleidae 24
platensis, Embernagra 105
Platibis 15
— flavipes 84
platyrhynchos, Anas 17, 19, 35, 52, 61, 79, 87,
92, 100, 122, 126
Plautus alle 62
Plectrophenax nivalis 40, 77
Plectropterus gambensis 71
Plegadis faleinellus 84, 87
Ploceidae 15, 22, 67, 69, 70, 107, 118
Ploceiden 45, 54
173
Ploceus 15
Pluvialis 42, 48, SS, 91, 92
— apricaria 103
— — apricaria 39
— dominica 73
Pluvianellus socialis 48
Pluvianus 15
Podargus 43, 45, 50
Podiceps 15, 75, 118, 130
— cristatus 35, 61, 84, S6
— — cristatus 52, 61, 72, 84, 96
— nigricollis 61
— oceipitalis 84, 86
podiceps, Podilymbus 84
Podicipedidae 12, 22—24, 60, 63, 70, 71
Podilymbus podiceps 84
Podoces biddulphi 49
Poephila guttata castanotis 73
Pogoniulus 43
Polihierax 55
Poliocephalus ruficollis 84
poliocephalus, Cuculus 104
—, Porphyrio 73
polyglottos, Mimus 119
Polyplectron 57
pomarina, Aquila 72, 97
pompadora, Treron 71
Porphyrio poliocephalus vitiensis 78
Porphyriops melanops 87
Porzana 92
— parva 35
— porzana 76, 98
porzana, Porzana 76, 98
pratensis, Anthus 103
princeps, Halcyon 16
prineipalis, Corvus 49
Prinia gracilis deltae 40
— — gracilis 40
pritchardi, Megapodius 49
Procellaria aequinoctialis 46
Procellariidae 63, 70, 83
Procellariiformes 68, 77, 143
Protonotaria citrea 14, 51
Prunella 123
— collaris 43
— modeularis 103, 108, 123, 127
— — modularis 106
Prunellidae 66, 70
Psammornis 81, 117—119
Psarocolius 15, 107
— atrovirens 105
— decumanus 105
— wagleri 105
Pseudoleistes guirahuro 106
— virescens 105
Pseudopodoces 55, 107
— humilis saxicola 49
174
Psittacidae 7, 11, 14, 23, 24, 54, 65, 69, 70, 78,
117, 118
Psittaciformes 16, 31, 60
Psittacula eupatria 78
— krameri manillensis 56
Psittacus 61
— erithacus 78
Psophiidae 64, 70
Pternistis afer afer 45
— — boehmi 45
— — ceranchii 45
— — humboldtii 45
— — leucoparaeus 45
Pterocles 15, 16, 140
— alchata 121, 125, 126
Pteroclidae 12, 24, 65, 70
Ptilinopus 15
— insolitus 71
— solomonensis meyeri 56, 77
Ptilonorhynchidae 67, 70
Puffiniden 55
Puffinus 15, 51, 118
— puffinus yelkouan 86
puffinus, Puffinus 86
pugnax, Philomachus 35, 47, 59, 72, 97, 102,
103, 121
punctigula, Chrysoptilus 51
punktiertes Rohrhuhn 98
purpurascens, Vidua 54, 87
purpurea, Ardea 87
pusillus, Chordeiles 51
— , Ereunetes 62
pusjio, Mieropsitta 55
Puter 79
Pyenonotidae 66, 70
Pyenonotus 118
pygargus, Circus 87, 146
pygmaea, Motacilla 41
Pygoscelis papua 14, 52, 121
Pyromelana 80
pyrrhonota, Petrochelidon 148
Pyrrhula pyrrhula 79
pyrrhula, Pyrrhula 79
Pytilia afra 54
— zmelba 54
Quelea quelea 46
quelea, Quelea 46
quercinus, Otus 122, 123
querquedula, Anas 85
Rabenvogel 23, 44
Racken 54
radiceus, Carpococcyx 53, 184
Rallen 88, 94
Rallidae 22, 64, 68, 70, 88, 94, 118
ralloides, Ardeola 87
Rallus aquaticus 76
— elegans 85
— limicola 85
Ramphastidae 54, 65, 70
Ramphastos 53
Ramphocelus carbo 105
Ramphodon naevius 46, 55
Rauchschwalbe 54
Rauhfußbussard 57
Rauhfußhühner 23
Rebhuhn 24, 68, 69, 76
Recurvirostridae 15, 50, 64, 70
reevesii, Syrmaticus 20
Regenpfeifer 12, 17, 74
Regulus 18, 76, 77, 118
— ignicapillus 103
— regulus 36, 46, 72, 76, 97
regulus, Regulus 36, 46, 72, 76, 97
Reiher 15, 22, 24
religiosa, Gracula 49
Remiz 11, 14—16
— pendulinus 111
RBemizidae 66, 70
Reptilien 16, 31
Rhea 13, 15, 16, 52, 107, 118, 145
— americana 73, 145
— — albescens 63, 102, 121
— — americana 46
Raheidae 63, 70
Rheinländer 79
Rhinoptilus 15
Rhodonessa 11, 14, 16, 23
rhodopareia, Lagonosticta 54
Rhodostethia 15
Rhopodytes tristis 104
Rihynochetidae 64, 70
Rhynochetus 73, 118
— jubatus 46
ridibundus, Larus 17, 35, 50, 56, 62, 99, 100,
122, 123,426
Riesenvögel, ausgestorbene 116
Riparia riparia 36, 56
— — riparia 54
riparia, Riparia 36, 54, 56
Rissa tridactyla 86
rixosus, Machetornis 104
rochii, Cuculus 104
Röhrennasen 68
Rohrdommel 75
Rohrhuhn, punktiertes 98
Rollulus 11, 14, 15
roratus, Lorius 78
Rostrhamus 14
Rotkehlchen 56
rubecula, Erithacus 15, 36, 56, 71, 102, 106, 108,
123, 127, 148
— , Zoothera 56
ruber, Phaethornis 27, 33, 72, 97
—, Phoenicopterus 84
rubicola, Saxicola 108
rubicundus, Grus 85
rudis, Ceryle 16
rufa, Alectoris 44
—, Lophura 14
ruficauda, Galbula 55
ruficollis, Caprimulgus 50
—, Corvus 51
— , Poliocephalus 84
ruficrista, Lophotis 14
rufigena, Caprimulgus 50
rufigularis, Falco 146
rufinus, Buteo 85
rufivirgatus, Arremonops 105
rufoaxillaris, Molothrus 106
rufoviridis, Galbula 55
rupestris, Columba 86
— , Lagopus 40
rustica, Hirundo 36, 54, 119, 120
rusticola, Scolopax 18, 52, 103
rytirhynchos, Ortygonax 87
Sägeracken 14, 54
Sänger (— Singvögel) 57
Sagittarius 16
* sakhalina, Erolia 40
Salanganen 15
Saltator 88
sandvicensis, Thalasseus 13, 17, 35, 36
Sasia 51
— abnormis 46, 51
— ochracea 51
satyra, Tragopan 78
Sauropatis 23
saxatilis, Monticola 19
saxicola, Pseudopodoces 49
Saxicola torquata rubicola 108
scandiaca, Nyctea 34, 52
Scaphidura oryzivora 104, 107
— — impacifa 53
— — oryzivora 53
schinzii, Erolia 73
Schlangenhalsvogel 12
Schleiereule 23, 57
Schnee-Eule 57
Schneehuhn 76
Schnepfen 12, 24, 31, 74, 94
Schnepfenvögel 12, 45
schoeniclus, Emberiza 77
Schopfwachtel 76
Schwalben 54, 144
Schwan, Schwäne 15, 75, 79, 119
Schwanzmeise 55
schwarzes Wasserhuhn 98
Schwarzspecht 43
175
scintilla, Selasphorus 103
seirpaceus, Acrocephalus 57, 62, 103
sclateri, jetzt wieder chrysocome, Eudyptes 52
scolopacea, Eudynamys 71, 104
Scolopacidae 12,15, 22, 31, 44, 45, 47, 64, 68, 70,
71, 80, 94, 113, 118
Scolopax 15, 24
— rusticola 18, 52, 103
scops, Otus 35, 77, 102
scriptus, Elanus 34
Scythrops 53
— novaehollandiae 53, 104
Seeschwalbe 17
Seetaucher 23, 76
Segler 12, 13, 54
Seiurus 15
Selasphorus scintilla 103
semifasciatus, Tockus 48
semipalmatus, Catoptrophorus 86
senegalensis, Cecropis 12
— , Centropus 104
Sennetti, Icterus 105
Sephaena, Francolinus 45, 46, 102, 121, 128
Serinus canaria 19, 79
sharpei, Gennaeus 69
Sialia sialis 102
sialis, Sialia 102
Sicalis flaveola 105
Silbermöwe 17, 55, 95
sinensis, Centropus 14, 104
Sing- (meist — Sperlings-) vögel 12, 14, 68
Siptornis 54
Sitagra 15
Sitta 42, 91, 93
— europaea caesia 36, 90
Sittidae 66, 70
smithsonianus, Larus 40
smyrnensis, Halcyon 35, 77
socialis, Pluvianellus 48
solomonensis, Ptilinopus 56, 77
Somateria 15, 17
— mollissima 17, 34, 35, 71, 99
sparverius, Falco 35, 122, 126
Specht(e) 51, 54
Speotyto cunicularia cunicularia 56
Sperber 58, 100
Sperlingsvögel (s. auch Singvögel) 12, 17, 31, 51,
94
Spheniscidae 11, 14, 16, 33, 47, 63, 70, 88, 118
Sphenisciformes 143
Spheniscus demersus 119
Spiegelpfau 57
Spinnen 143
spinosa, Jacana 34
spinus, Carduelis 55, 79
Spizaetus coronatus 78
Spizella breweri 105
176
spiendens, Corvus 51
Spottdrossel 45
Squatarola 48, 73
Stärlinge 53, 54
Steatornis 14, 15
Steganura 54
— paradisaea 54
Steinadler 46
Steinhuhn 76
Steinwälzer 12
Steißfuß, Steißfüße 12, 24, 75
stellaris, Botaurus 75
stellata, Gavia 13, 47, 72, 84, 97
stelleri, Cyanocitta 49
Stellula calliope 146
Steppenhuhn 22
Stercorariidae 64, 70
Stercorarius parasiticus 59
Sterna 15, 92
— albifrons 17, 62
— — albifrons 56
— — antillarum 86
— anaethetus 33, 41, 69, 73, 77
— — anaethetus 35
— fuscata 33, 147
— hirundo 17, 35, 52, 37, 99
— — hirundo 32, 56
— paradisaea 17, 40, 75, 119
Stockente 17, 122
Störche 15
stolidus, Anous 147
Strandläufer 12, 24, 94
Strauß(e) 10, 14, 27, 34, 41, 45, 46, 61, 76, 79,
81, 119, 120
Straußartige 117
Straußenvögel 66
Streptopelia humilis 71
— turtur 62
striata, Muscicapa 119
stricklandi, Chrysocolaptes 51
Striges 61
Strigidae 11, 12, 14, 22, 23, 65, 118
Strigiformes 16, 23, 24, 31, 60
Strigops 16
striolata, Cecropis 12
Strix 42, 92
— aluco 36, 77, 79, 146
— — aluco 56, 89
— nebulosa lapponica 72, 96
struthersii, Ibidorhyncha 50, 87
Struthio 10, 11, 27, 41, 43, 73, 76, 79, 81, 83,
107, 117— 119, 128
— anderssoni 102, 118
— camelus 43, 46, 52, 63, 73, 86, 97, 102, 120,
121, 148
— — australis 29, 99
— — camelus 31, 34, 39
Struthiolithus 114
Struthionidae 12, 14, 45, 63, 70
sturmii, Ixobrychus 55
Sturmmöwe 17
Sturnidae 49, 67, 70
Sturnus 93, 118
— malabaricus nemoricola 43, 49
— vulgaris 18, 36, 145, 146
subflava, Amandava 99
Süßwasserschnecken 143
Sula 12, 118
suleirostris, Crotophaga 53, 104
Sulidae 63, 70
Sulmtaler Huhn 76
sulphuratus, Pitangus 104
sumatrana, Ardea 56
Sumpfohreule 57
swainsoni, Catharus 71
Sylvia 42, 88, 91, 93, 123
— atricapilla 19, 108
— borin 18, 19, 36, 51, 87, 102, 108, 118
— communis 51, 52, 57, 103, 108, 123, 127
— — communis 19
— curruca 18, 51, 103, 122
— hortensis 102, 106
— — hortensis 106
— melanocephala 51, 106
— nisoria 51, 102, 106, 108
— — nisoria 90
sylvia, Tanysiptera 69
Sylviidae 22, 23, 53, 66, 70, 117, 118
Symplectes 15
Synallaxis 107
Synthliboramphus 15
Sypheotides indica 14
Syrmaticus reevesii 20
Syrrhaptes paradoxus 22
Tachyeres 15
Tachyphonus 113
Tadorna tadorna 17, 71
tadorna, Tadorna 17, 71
Tagraubvögel 12
taitensis, Urodynamis 43
tancolo, Picus 51
Tanysiptera sylvia nigriceps 69
tao, Tinamus 14, 16
Taoniscus nanus 50
Tapera 107
— naevia 104
Tapera-Kuckuck 107
Taraba 15
tarda, Otis 35
tataupa, Crypturellus 50
Taube(n) 12, 15, 22, 31, 55, 56, 76, 78, 79
temminckii, Cursorius 14
— , Erolia 47, 56, 103
temminckii, Picumnus 55
Tetrao 57, 91, 92
— urogallus 35, 62, 72, 97
— — urogallus 89
Tetraogallus altaicus altaicus 56
Tetraonidae 22, 23, 44, 64, 70
Tetrastes bonasia 61, 85
tetrax, Otis 52
tetrix, Lyrurus 59, 61
Thalasseus 92
— sandvicensis 13, 17, 35, 86
Thinocoridae 15, 64, 70
Thraupidae 66, 70
Threskiornithidae 61, 70, 88, 118
Thryothorus modestus 103
tibetanus, Corvus 51
Timaliidae 66, 70
Tinamidae 14, 49, 63, 68, 70, 78, 88, 118
Tinamiden 16, 23
Tinamus tao 14, 16
tingitanus, Corvus 51
tinnunculus, Falco 18, 35,85, 92, 98,122,123, 126
titan, Aepyornis 27, 29, 33
Tockus erythrorhynchus 48
— fasciatus semifasciatus 48
Tölpel 12
torda, Alca 35, 86, 119
Tordalk 140
torquata, Ceryle 16
—, Chauna 63, 84
—, Saxicola 108
torquatus, Lybius 104
—, Turdus 71, 77
torquilla, Jynx 90, 102
totanus, Tringa 35, 62, 71, 103
Toxostoma lecontei lecontei 33
Tragopan satyra 78
Trappen 14, 48, 76
Treron pompadora 71
Trichoglossus novaehollandiae moluccensis 73
Trichopieus cactorum 51
tricolor, Agelaius 119
tridactyla, Rissa 86
Tringa ochropus 71, 73
— totanus 35, 62, 71, 103
tristis, Rhopodytes 104
trivialis, Anthus 102
Trochilidae 11—15, 18, 22, 24, 43, 44, 65, 70,
75, 88, 118
Trochilide(n) 10, 118
Troglodytes 118
— troglodytes 73, 103, 108
— — troglodytes 19
troglodytes, Troglodytes 19, 73, 103, 108
Troglodytidae 66, 70
Trogon 14
Trogonidae 14, 65
12 Oologie 48. Lieferung
Trogoniden 16
troille, Uria 41
tropica, Fregetta 32, 41
Truthühner 68
tukki, Meiglyptes 51
Turdidae 22, 23, 48, 53, 66, 70, 71, 88, 118
Turdoides fulvus acaciae 40
Turdus 77, 93, 123
— ıliacus 71
— merula 62, 71, 99, 118, 128
— — merula 46
— migratorius 148
— naumanni eunomus 56
— philomelos 36, 102, 123, 126
— — clarkei 123
— pilaris 34, 77
— torquatus 71, 77
— viscivorus 77
— — visceivorus 52
Turnicidae 64, 70
Turnix 14
turtur, Streptopelia 62
Tyrann(en) 54
Tyrannidae 54, 65, 70, 118
Tyrannus 15
Tyto 14, 16, 23, 92
— alba 23, 57, 146
Tytonidae 22, 23, 65, 70
Uferschwalbe 54, 56
Uhu 46
undulata, Chlamydotis 55
undulatus, Crypturellus 14, 16
Upupa 15, 118
Upupidae 65, 70
urbica, Delichon 90
Uria 15, 22—24, 130
— aalge 26, 41
— lomvia 62, 66, 112, 114
— troille 41
Urodynamis taitensis 43
urogallus, Tetrao 35, 62, 72, 89, 97
ustulatus, Catharus 71
Vanellus 16, 24, 77, 92
— vanellus 26, 52, 56, 72, 86, 97, 99, 100, 103,
119
vanellus, Vanellus, wie vorige
variolosus, Cacomantis 53
varius, Cuculus 104
Veniliornis 51
Verreauxia 51
vespertinus, Falco 141
Vidua 54
— funerea 54
— — purpurascens 54
— macroura 54, 104
178
Vidua orientalis obtusa 54 Wanderfalke 46
— paradisaea 54 Wasserhuhn, schwarzes 98
Viduinae 54 weißes Leghorn 141
violacea, Nyctanassa 78 Wildente 18
Vireonidae 67, 70 wilsonianus, Asio 122, 126
virescens, Pseudoleistes 105 Witwen 54
virginianus, Bubo 122 Wüstenläufer, siehe Rennvögel 12
— , Colinus 56, 76, 85 Wyandotte 76
viridis, Picus 52, 102
viscivorus, Turdus 52, 77 xanthopygaeus, Picus 51
vitiensis, Porphyrio 78
vociferus, Caprimulgus 50 yelkouan, Puffinus 86
vulgaris, Sturnus 18, 36, 145, 146
Vultur 15 Ziegenmelker 43, 75
— gryphus 23, 78, 115 Zonibyx modestus 34, 103
Zonotrichia capensis 105
Wachtel 76 Zoothera citrina rubecula 56
wagleri, Psarocolius 105 Zosteropidae 66, 70
Waldkauz 77 Zwergfalken 53
Setzfehler und Berichtigungen
Seite 8, bei Tab. 19: Statt ‚„‚kappa- (x-) Methode‘: Kappa- (x-) Methode
Seite 42, Abschnitt V, 9. Zeile: Statt ‚„S. 87 —95°: S. 81-95
Seite 46, 7. Zeile: Statt „Abschnitt 5°: Abschnitt 5, S. 106
Seite 53, 5. Zeile: Statt „Verwandte“: Verwandten
Seite 55, 3./4, Zeile: Statt ‚„Puffinas“‘: Puffinus
Seite 75, 2. Zeile: Statt ‚‚(s. S. 12206)‘: (s. S. 141)
Seite 119, 17. Zeile: Statt ‚‚(Struthio 1)‘: (Struthio)
Nachträge zu Band I: Palaeognathae, Gobipterygiformes?, Struthioniformes 179
Nachträge zu Band I „Handbuch der Oologie“
Nachträge zu Palaeognathae (Bd. I, S. 1—46, 1960)
Vor 1. Ordnung incertae sedis: Gobipterygiformes?
Seite 3: 2 fossile, stark mineralisierte Eier und fünf Eistücke wurden 1971 aus dem (frag-
lich) Mittel-Campanien der oberen Kreide in Khermeen Tsav, Gobi, gesammelt und
die darin enthaltenen bzw. daran haftenden Embryonen im Institut für Paläobiologie,
Warschau, untersucht. Wegen der Ähnlichkeiten im Schädelbau wurden sie der aus
der gleichen Gegend stammenden palaeognathen Gobipteryx minuta Elzanowski, 1974,
zugewiesen. Da bisher erst die Osteologie der (schlüpfreifen) Embryonen veröffent-
licht wurde, die relativ lange, fast an die Megapodiidae heranreichende Unterarm-
und Handskelette haben, was auf sofortige Flugfähigkeit beim Schlüpfen schließen läßt
[ELZANoWsKI1, Palaeont. polon. (Warschau) 42, S. 147 —179], kann hier nur auf die zu
erwartende genaue Beschreibung der Eier hingewiesen werden. Die auf dem XVIIII.
Congressus Internationalis Ornithologicus, Moskau, 1982 vorgeführten Dias der gan-
zen Eier und mündliche Mitteilungen von Herrn ELZANOWsKI lassen auf eine einmalige
Form dieser Eier schließen. Sie sind fast zylindrisch, aber am Äquator streckenweise
nicht oder kaum gekrümmt (verformt?); die beiden Pole sind gleichmäßig kurz und
stumpf gerundet. Die Länge beträgt 40—50 mm, der Durchmesser nur etwa 20 mm,
was ein sonst nicht vorkommendes Achsenverhältnis k = 2,0—2,5 ergäbe. Übrigens
weist ihr Schalenquerschnitt (l. c. Taf. 42, fig. 1h) auf eine Doppelschale (ovum in
ovo?) hin.
1. Ordnung?
Nachträge zur Ordnung Struthioniformes (Bd. 1,8. 1—38, 1960)
Seite 9, in der Fußnote nach „wurden“ fortfahren: Die zahlreichen Eierfragmente von
Straußen aus W-Aserbeidschan wurden von BURCHAK-ABRAMOVICH & VEKUA (Acta
-Zool. Cracov. 16, S. 1—26, 1971) dem von beiden Autoren 1971 beschriebenen Stru-
thio transcaucasius O-Georgiens zugeschrieben (Schalendicke 2,9—3,3 mm) und wegen
der Herkunft aus dem Ober-Pliozän sowie der geographischen Trennung die Vereini-
gung mit Struthio chersonensis abgelehnt. Nach diesen Autoren (l. c.) müssen sie wie die
folgenden Scherben aus dem Pliozän noch genauer untersucht werden. Die aus der
Kuybyschew-Provinz (chersonensis) sind 3,4—3,5 mm, die aus der Moldau (Struthio
spec.) nach BURCHAK-ABRAMOVICH & KonkovA (1967) 2,6—3,6, die vom lli-Fluß in
Kasachstan 2,3 —3,5 mm dick.
8. Textzeile von unten: Statt ‚1868: 1886.
Seite 11, 22. Zeile von oben bei Struthio wimani anfügen: Die Eigröße wurde nach einer
einzelnen Scherbe auf 186 x 153 mm geschätzt. Am selben Ort wies SAUER (Cimbesa-
sia Al, S. 48, 1968) zwar auf die aepyornithide Porenstruktur der beiden vorliegenden
Scherben hin (wie schon SCHÖNWETTER), führte diese nordchinesische Art aber in einer
1) Zur Überschrift „1. Ordnung‘‘: In der 2. Auflage des 1. Bandes von PETERS, Check-list of birds
of the world (Hrsg. MAYR & COTTRELL, Cambridge, Mass., Mus. Comp. Zool., hier zitiert als
PETERS 1, 1979?) führt Mayr (S. 3—11) die 4 ersten Ordnungen der 1. Auflage (1930) und sinn-
gemäß die beiden ausgestorbenen als Unterordnungen der Ordnung Struthioniformes an.
12*
180 Nachträge zu Band I: Struthioniformes
neueren oologischen Arbeit (Bonner Zool. Beitr. 23, S. 3—48, 1972) nicht unter den
„aepyornithoiden“ Straußen auf.
Seite 12, nach 4. Zeile als Absatz zufügen: Struthio spec. Pliozänfunde von Straußeneiern
im American Museum of Natural History, New York, die in den dreißiger Jahren aus
der äußeren Mongolei kamen, werden von SAUER (1972, S. 23—37, gute Abbildungen)
großenteils, manche aber unsicher, zum Struthio c. camelus-Typ gerechnet, zum klei-
neren Teil wegen längsgerichteter Poren als aepyornithoid bezeichnet (s. Nachtrag zu
S. 32). Dicke zahlreicher Scherben 1,80 —2,40 mm.
Struthio spec. Weitere Straußeneifunde aus der Sowjetunion sind von BURCHAK-
ABRAMOVIcH (Vertebrata palasiat. 6, S. 299—309, 1963) referiert worden. Sie stammen
vom Don, von Turkmenien und dem Sailijsker Alatau, ferner aus der Burjaten-Mon-
golei (Selenga-Tal in Daurien, A. D. Ivanov, Trudy Buryat. Kompl. Sib. Ak. Nauk 2,
S. 67 — 74, 1959). Während aus der Sowjetunion nur 4 ganze Eier (Ukraine) vorliegen,
sonst Eischerben, ist in der vorgenannten Zusammenfassung von 71 ganzen Eiern aus
China die Rede, erstaunlicherweise von 15 ‚‚Struthio chersonensis‘‘ aus S-China (wohl
verdruckt für N-China) nach ANDERSSON (s. Bd. I, S. 10). Zu diesen ganzen gehören 3
vom Osthang des Taihangschan-Gebirges in Honan und Schansi aus dem Pliozän
(nach BROoDKoRßg aber Oberpleistozän), die 190 x 156, Schalendicke 2,24; 187 x 151 und
181 x 152 mm messen (An, Vertebr. Palasiat. 8, S. 374—386, 1964, mit Fundortkarte
von Straußeneiern in China!). Auf einer Abbildung eines dieser (oberpleistozänen ?)
Struthio anderssoni-Eier scheinen die Poren wenigstens teilweise durch fächerförmige
Gabelung, wie bei Aepyornis, entstanden zu sein (An, 1. c., Taf. II, Fig. 4, S. 385).
Verschiedene Porenbilder fanden sich auch bei 63 unterpliozänen Scherben von i.D.
2,22 mm Dicke aus Candır in Anatolien, die bei einer Phalanx lagen. Diese wurde von
SAUER (Ibis 121, S. 494—501, 1979) dem aus der Ukraine 1959 beschriebenen Struthio
brachydactyla Burchak-Abramovich zugewiesen. Neben seinen Scherben lagen andere
von Struthio camelus-Vorfahren, die sich nicht vom heutigen Straußenei unterscheiden.
Die Annahme von SAUER, daß gefurchte, nicht glatte Schale mit aepyornithiden Ril-
len, in denen Poren liegen, ovale Eigestalt und größeres Eimaß Artkennzeichen seien, ist
wohl kaum zu beweisen, zumal die Extreme durch Zwischentypen verbunden sind.
1978 schien SAUER auch dieser Meinung zu sein; denn er benannte sehr viele Scherben
aus 16 Fundstellen bei Ouarzazate, Marokko, nicht, die vielleicht dem oberen Miozän
oder unteren Pliozän angehören und 3 Porentypen vorweisen. Diese sind unabhängig
von der Schalendicke (1,4—2,7 mm) und sind trotz gleicher Porendichte (82—260 je
cm?; siehe aber SAUER 1980: Je dicker die Schale, um so dichter die Poren) als 3 Typen
anzuerkennen: Die mit einzeln stehenden Poren (Typ 1) haben i. D. 0,021 um Poren-
durchmesser, wogegen die in i. D. 0,384 um langen Porenrillen oder -komplexen liegen-
den Poren von Typ 3 0,004 um größer sind. Zwischen beiden Scherben- und Poren-
typen steht der vermittelnde Typ 2. Eine nach dem Krümmungsradius geschätzte Ei-
größe liegt 56%, über dem des größten von 169 gemessenen rezenten Struthio camelus
australis. Jetzt erst stellen die Autoren die Frage (und bejahen sie offensichtlich), ob
in Struthio-Populationen jener Zeit die aepyornithinen und struthioninen Porentypen
(hier bei Typ 3 bzw. Typ 1 vertreten) nebeneinander vorkommen [Palaeontographica
(A) 161, S. 32—54, 1978].
Vor 14. Zeile von unten als Absatz zufügen: Struthio (Pachystruthio) pannonicus
Kretzoi, 1953. Mehr als 100 Eischalenfragmente fanden sich im Unterpleistozän W-
Ungarns bei Kislang, Transdanubien; sie gehören zu dieser Art, von der sonst einzig
der Typus, ein großer Zehenknochen, vorliegt. KRETZOI schreibt von linienartig ange-
ordneten Poren, die sich nach außen in längsgerichteten Rillen öffnen (also aepyor-
nithid im Sinne SAUERS sind? Hrsg.). An nicht abgeriebenen Stellen ist die Schale
3,0—3,4 mm dick, ihre Größe wird auf 220 x 180 mm geschätzt (KrErzoI, Aquila
Nachträge zu Band I: Struthioniformes 181
59 —62, S. 361 — 366, 1955) [womit sie sich als (fast ?) größte eurasiatische Eischale von
der des Struthio chersonensis unterscheidet. Sie kommt aber an die des nordafrikani-
schen Psammornis rothschildi heran. ]
Struthio spec. Zwei fast ganz erhaltene Eischalen und 302 Scherben liegen aus Lanza-
rote (O-Canaren) vor. Sie sind wie bei Struthio c. camelus mit relativ wenigen kleinen
runden Poren versehen, die diffus verteilt oder bis zu dritt in Gruppen stehen. Schalen-
dicke 2,1—2,9 mm, Größe 150 x 115 bzw. 150 x 70—120 (seitlich zusammengedrückt)
mm. (SAUER & ROTHE, Science, N. Y., 176, S. 43—45, 1972, u. SAUER 1972, S. 16— 23,
viele Abbildungen).
Es folgen nun wieder afrikanische Ratiteneier: Struthio oshanai Sauer, 1966. Aus dem
weißen Sand rings um die mehr lehmige Etoschapfanne in Südwest-Afrika wurden bei
Beisebvlakte nördlich von Namutoni 83 mineralisierte, dunkel ockerfarbene Schalen-
stückchen gegraben, die in etwa 38 (vielleicht auch nur 20) m Tiefe lagen und wahr-
scheinlich Reste eines einzigen Geleges im oberen Tertiär oder im unteren Pleistozän
sind. Die Zweige der Porenkanäle münden rosettenartig an der Oberfläche in rundli-
chen Vertiefungen, die meistens mit benachbarten durch sichtbare Furchen verbunden
sind. Auch lineare Einzelporen kommen in den Furchen vor. Die Schalen gehören nach
SAUER zum Struthio-Typ. Sie sind 3,2—4,0, i. D. 3,6 mm dick, ein Maß, das bei den
übrigen fossilen Strutkio-Eiern Afrikas und Asiens nicht erreicht wird (SAUER, Cimbe-
sasia 14, 52 S., 1966), aber bei Psammornis von N-Afrika und fast bei Struthio panno-
nicus (s. 0.) aus Ungarn. [Die dicken Schalen fossiler Struthio-Arten (Bd. I, S. 9—12)
könnten in wärmeren Perioden bzw. in höheren Lagen mit verdünnter Atmosphäre
den Wasserverlust der Eier während der Bebrütung verringert haben oder auf andere
Weise funktionell bedingt sein. Hrsg.]. Später wurden mit dem Genfer Linsenmesser
Krümmungsradien der Scherben bestimmt und daraus die Größe der oshanai-Eier
auf 174 x 141 mm, also etwa wie die Maxima von Struthio camelus, geschätzt (SAUER,
Cimbesasia A1, S. 52—53, 1968).
Seite 14, nach 6. Zeile bei Psammornis rothschildi als Absatz anfügen: Die dicken Ei-
scherben des vielleicht von S-Arabien bis NW-Afrika verbreiteten Psammornis legen
doch den Verdacht nahe, daß auch die südwest-afrikanischen Scherben, die SAUER
(s. vorigen Absatz) beschrieb, in die Nähe dieser Gattung gehören. Allerdings wäre
die fragliche Altersbestimmung Eozän für Psammornis dann noch fraglicher, da
oshanai soviel jünger ist.
7. und 14. Zeile: Statt ‚‚Iybicus‘“: libycus.
Am Ende hinter Psammornis zusetzen: SAUER widmete der nur nach Eiresten bekann-
ten Gattung Psammornis eine spezielle Arbeit (Bonner Zool. Beitr. 20, S. 290—310,
1969). Auch er gibt kein geologisches Alter dieser Funde an, hält aber Vermutungen
über eozäne Herkunft für absolut unwahrscheinlich. Sicher ist ihm wie SCHÖNWETTER
die Zugehörigkeit zum Struthio-Typ. Die Unterbringung bei Rhei- und Dinornithi-
formes (DUGHI & SIRUGUE, C.R. Somm. Seanc. Soc. geol. France 1964, S. 149 —150)
war ihm wohl unbekannt, wird aber kaum angenommen werden. Die wenige bis
9 Millimeter dicke Opakschicht als milchigweiße Verbindung von Mammillen- und
Schwammschicht, die schon EDWARDS sah, dürfte von VoIsın (Oiseau 41, S. 245—256,
3 Taf., 1971) übertrieben für sehr wichtig gehalten worden sein. In Fig. 2 unserer Tafel 2
ist sie jedenfalls nicht sichtbar. Voısın untersuchte 58 etwa 30km N von Port-
Etienne in Mauretanien gefundene, auf etwa 40000 Jahre datierte Scherben, die über
3, maximal sogar 3,7 mm dick sind.
Psammornis libycus faßt SAUER (l.c.) wegen der dem Struthio camelus camelus ähn-
lichen Porenstruktur sogar als möglichen Vorläufer dieser Art auf (was eine Heraus-
182 Nachträge zu Band I: Struthioniformes
nahme aus der Gattung Psammornis nahelegt, Hrsg.). Die Eigröße wird von ihm nach
Krümmungsmessungen mit dem Genfer Linsenmesser auf 143 x 127 mm und die ur-
sprüngliche Dicke der Scherben (wohl doch zu hoch) auf 2,80 mm geschätzt.
Seite 18, 10. Zeile bei Pterocnemia pennata pennata nach ‚‚albescens‘‘ ergänzen: Tatsäch-
lich wurde die obige Darstellung von Hortz bestätigt: TYLER & FOWLER (J. Zool. 187,
S. 283—290, 1979) fanden, daß Eier von Rhea americana doppelt soviel Porenöffnun-
gen und -gruben wie ‚„‚Ahea darwinii‘‘, also diese Art, haben.
Seite 21, 5. Zeile von unten bei Caswarius hinzufügen: Auch die aus der Gegend von
Hollandia stammenden Stücke von Eiern des Casuarius unappendiculatus aurantiacus
Rothsch. sind sehr groß (RAnDp, Bull. Am. Mus. Nat. Hist. 79, S. 426, 1942) und erge-
ben ohne Berücksichtigung der in unserer Liste stehenden 3 Inseleier ein Maximum
für Casuarius, zumal RAwD gerade die Größenvariation erfassen wollte, als er diese
Eier aus vielen herbeigebrachten auswählte.
Seite 23, 11. Zeile von oben: Statt ‚‚Dromiceiidae‘‘: Dromaiidae.
12. Zeile von oben, 7. Zeile von unten; S. 24, 6. und 11. Zeile von oben: Statt ‚‚Dromi-
ceius“: Dromaius.
Seite 24, nach 15. Zeile als Familie einfügen:
Familie Dromornithidae, Groß-Emus
Genyornis newtoni Stirling & Zietz. Mehrere 100 Eischalen, die mehr als 40000 Jahre
alt sind, wurden aus einer Sanddüne nahe Port Augusta, South Australia, gesammelt.
Sie stammen zu einem Fünftel von Dromaius n. novaehollandiae, die übrigen mit ziem-
licher Sicherheit von Genyornis, einem der im Pleistozän lebenden Groß-Emus. Seine
Eier sind hier an der glatten Oberfläche zu erkennen, in der kurze Gruben mit je einer
Pore in fast parallel verlaufenden Linien angeordnet sind. Die Schalendicke beträgt
1.D. 1,15 mm (gegen 1,09 mm bei Dromaius), und aus Krümmungsmessungen ließ sich
eine Eibreite von 125 mm errechnen (WILLIAMS, Alcheringia 5, S. 133 —140, 1981).
Fraglich scheint, ob WILLIAMS zu Recht eine Eilänge von nur 155 mm angesetzt hat,
woraus sich nach ihm ein Frischvollgewicht von durchschnittlich 1300 g ergibt, aber
auch eine kurzovale Form mit k = 1,24. Das weicht von den nächsten Verwandten,
den Dromaiidae und Casuariidae, mit k = etwa 1,50 (fast zu?) stark ab.
Seite 25, 4.—3. Zeile von unten bei Casuarins unappendiculatus aurantiacus einschieben:
6 Eier messen 139—160 x 94—105 mm (Rap 1942), A= 150, B=99mm, G
=8328g,k= 1,41.
Seite 23—29, zur Liste der Moa-Eier: Das unter Nr. 14 angeführte Ei ist identisch mit
Nr. 10, das nach KrogscHE (Neue Brehm-Bücherei 322, S. 26, 1963) zunächst fälsch-
lich mit der Riesengröße 300 x 200 mm erwähnt worden ist; es stammt von Crom-
well. Weitere Einzelheiten über Eier der Dinornithidae s. bei KROESCHE (l. c., S. 23
bis 27): Auch unsere Nr. 5 und 11 übernahm KroescHe mit Recht nicht; denn schon
MEYER hat vermutet, daß die Größe von Nr. 5 nur geschätzt sei, und BENHAM (Ibis
1903, S. 632—634) hinzugefügt, daß dieses Ei nicht von der Nordinsel, sondern vom
Molineux-Fluß, Südinsel, stamme. Es ist nach den Maßen und dem Fundort mit Nr. 7
identisch. — Nr. 11 unserer Liste war von MEYER in einer Fußnote (Ibis 1903, S. 190)
als Maß eines von Mantell angefertigten Artefakts angeführt worden und entfällt auch,
da es kleiner ist als Nr. 13, das gleichfalls von Mantell geformte, in unserer Liste als
zerbrochen gemeldete Ei. Es fallen fort unsere Nr. 3 und 9 (unberechtigt) und die
Mantellschen restaurierten Nr. 8 (unberechtigt ?) sowie Nr. 13 (berechtigt), ferner die
Meverschen Nr. 5 und 11 bei KRoEScHE. Es bleiben 8, wozu die 6 unserer Fußnote
und fünf ‚‚neue‘‘ kommen, zusammen 19. Letztere sind 4 vom Canterbury-Museum,
Neuseeland, alle von der Wairau-Mündung, mit den Maßen 207 x 139, 207 x 145,
U U z
Nachträge zu Band I: Struthioniformes 183
215 x 146 mm (Pachyornis elephantopus?), 205 x 158 (Euryapteryx gravis?), ferner
1 von der Doubtless Bucht (1940 gesammelt), nach ARCHEY (1941) (aus KROESCHE)
125 x x mm [Euryapteryx curtus (Owen) oder tane KROESCHE, 1963]. So ergäbe sich
eine Gesamtliste von 21 (22) Eiern, wenn man zu den 19 bei KRoESCHE unsere Num-
mern 3 und 9 sowie unsicher 8 hinzunimmt. — Wegen des Wegfalls unserer Nr. 14
ändern sich die sowieso unsicheren Artnamen: Zu Pachyornis elephantopus zählt
KROESCHE unsere Nr. 4, 6 und 7, zu Anomalopteryx didiformis Nr. 3, zu Euryapteryx
curtus oder tane Nr. 1 und 2, zu Euryapteryx gravis Nr. 8 (und 9), zu Dinornis robustus
Owen Nr. 10, zu D. maximus Nr. 12.
Sollte CRACcRAFT (1976, S. 189— 205) mit der Reduzierung der Artenzahl auf 13 Moas
rechthaben, d.h. sollten 3sympatrische Artenpaare als$ und? und zwei weitere Arten-
paare als Rassenpaare anzusehen sein, dann würden die vorstehenden Eibestimmungen
zum Teil wieder und wie folgt zu ändern sein: Euryapteryx tane (auf alle Fälle synonym
zu E. exilis Hutton) würde (2 von) E. curtus, Euryapteryx gravis (2 von) E. geranoides
(Owen), Dinornis robustus Südinsel-Rasse von D. novaezealandiae Owen (dem früheren
D. ingens), und D. maximus Südinsel-Rasse von D. giganteus Owen. Aber, wie gesagt,
alle Eier außer einem von Emeus crassus sind mit Fragezeichen bestimmt. Da nach
MILLENER (1982) Anomalopteryx oweni synonym zu didiformis ist, hätten wir es nun
mit nur 12 Moa-Arten zu tun.
Bei Nr. 5: Statt ‚‚Awahuri, N. I.“: Molyneux-Fluß, S. I.
Letzte Zeile der Fußnote, S. 28: Statt „138°: 158.
Seite 32, Legende Taf. 4, Fig. 1: Statt ‚„‚„Dromiceius‘': Dromaius.
14. Zeile bei Aepyornithidae nach ‚‚Apterygidae‘ einfügen: In den langen Porengru-
ben des Typs a können aber bis zu 5 Poren münden, die durch fächerartige Gabelung
eines oder zweier Porenkanäle in der Schwammschicht der Schale entstehen (TyYLEr &
Sımkiss, Proc. Zool. Soc. London 133, S. 230£., 1959). Die im Typ d vertretenen, nicht
in Längsrichtung geordneten Poren hat auch SAUER (Bonner Zool. Beitr. 23, S. 12,
1972), und zwar als diffuse oder Strudelmuster vor allem an den Polen, gesehen
(Schalendicke 2,90 mm). Die verschiedenen Porentypen sind auf SAvERs Abbildungen,
z. T. nach rasterelektronischen Aufnahmen, gut wiedergegeben (l. c. S. 13—20).
Ob man allerdings Schalen mit in der Längsachse verlaufenden Porenrillen, -reihen
und -stricheln, die SAUER den aepyornithoiden Typ nennt, nur bei Aepyornithiden
findet, die Scherben außermadagassischer Vogeleier, die so aussehen, also dieser Rati-
ten-Gruppe zuordnen muß, erscheint unsicher, solange die zugehörigen Reste ihrer
Erzeuger nicht gefunden werden. Solche Scherben gibt es in tertiären Schichten
Lanzarotes (O-Canaren), wo sie neben denen vom eindeutigen Struthio c. camelus-Typ
gefunden wurden (s. Nachträge S. 12 u. 14), von Hasnot (Pandschab, Indien, Pliozän,
Schalendicke 2,50— 2,90, i. D. 2,76 mm) und aus dem frühen Pliozän der inneren
Mongolei. Daß die Dicke dieser mongolischen Scherben (1,830 —2,40) nicht über die
der Struthionidae hinausgeht, spricht gegen SAUER (1972, S. 3—48) nicht für die Zu-
gehörigkeit eozäner(?) bis pliozäner asiatischer Ratiten zur Ahnenreihe der sicher bis
vor 1000 Jahren [BERGER & May, Nature (London) 258, S. 709, 1975) in Madagaskar
lebenden Aepyornithidae, sondern mehr für eine bei rezenten Straußen nicht mehr
auftretende Variante der Porenanordnung bei diesen außermadagassischen Vögeln,
also für die Zugehörigkeit zu den Struthionidae (s. Nachtrag zu S. 12, 4. Zeile von
oben).
Übrigens sind die von BRODKoRB (Bull. Florida State Mus. Biol. 7, S. 205, 1963) als
sicher hierher gestellte, unteroligozäne Stromeria fajumensis aus Ägypten und der mit
Fragezeichen angeführte (? eozäne) nordafrikanische Psammornis (nur Eier bekannt)
184 Nachträge zu Band I: Struthioniformes
als Namen für solche Vorfahren vorhanden, aber Psammornis rothschildi-Eier galten
schon bei SCHÖNWETTER als völlig den Straußeneiern ähnlich (Bd. I, S. 12—14).
Am Textende nach ‚‚feststellbar‘“ einfügen: Nur WETMOoRE (Nat. Geogr. Magaz. 132,
S. 488-493, 1967) berichtet bei Aepyornithidae von einem Ei mit Inhalt, nämlich
mit mumifiziertem Embryo. — BisrorD (in: RıcHArpson 1975) vermutet in einer
Röntgen-Masse den verdickten Dotter (Länge 5 cm).
Seite 33, 11. Zeile nach ‚sind‘ einfügen: Tatsächlich ist bei BRODKorB (1963, S. 207)
Aepyornis titan als Synonym von Aepyornis maximus angeführt, was SCHÖNWETTERS
Annahme bestätigt.
Zur Tabelle der Aepyornis-Eier nachtragen: Schon Henrıcı [Mitt. Natf. Ges. Bern (4)
14, S. 138, 1957] hat 5 Eier hinzugefügt, von denen das in Toulouse (Astro 1951) mit
729 mm den kleinsten Längsumfang unter den gemessenen Aepyornis-Eiern hat,
wogegen die in Solothurn und Bern (beide abgebildet), Basel und Schönenwerd bis zur
Mittelgröße ansteigen. HEnRIcI schätzt die Zahl der vorhandenen ganzen Eier auf 50.
Hinzugekommen ist 1955 ein kleineres Ei in Hamburg (L. Koch leg.), die beiden dorti-
gen Listeneier fielen 1943 den Bomben des 2. Weltkrieges zum Opfer. — Wieviel wirk-
lich existieren, ist also noch nicht festgestellt worden. Die Liste von MEYER & HELLER
(Abh. Mus. Dresden 9, Nr. 7, 18 S., 1901) ist von CAUDERAY (Oiseau N.S. 1, S. 636
bis 637, 1931) genau kopiert und nur um ein ‚‚neues“ Ei, Nr. 22 unserer Liste, ver-
mehrt worden.
Kurz vorher wurden zwei mit den Maßen 325 x 225 und 305 x 210 mm gemeldet, eins
von CH. F. SwisscLe (für Amerika ?), das andere von DucHESsNE für das Museum in
Sens, Frankreich, beschafft (gesammelt?) (Illustration vom 1. III. 1930 laut BuREAU
1960, S. 207). Ferner waren bisher bei uns nicht angeführt fünf Eier: Das der Samm-
lung R. Kreuger, jetzt im Zoologischen Museum Helsinki, mißt nach Kreuger (briefl.)
337 x 236 mm (ConGREvE 1950) und ist damit das zweitgrößte. Das von G. Lacoin
der Geologischen Abteilung der Universität Laval in Quebec geschenkte Ei ist mit
332 x 217 mm Größe, etwa 1580 g Schalengewicht und 676 mm Umfang (am Äquator,
also wie unser u gemessen) (BUREAU 1960, S. 206) einmalig in seiner sehr länglichen
und doch stumpfen Gestalt (k = 1,53!), wodurch es mit etwa 81 Volumen zu den
kleineren als mittelgroßen gehört. Zwei weitere stehen bei CugITT und RiCHARD; dem
Herausgeber wurdein Perth 1974 (Dank den Herren STORR und SERVENTY!) ein inSW-
Australien gefundenes (wohl angeschwemmtes) Ei gezeigt, das auch DELACOUR als
Aepyornis-Ei bezeichnet hatte.
SAUER (J.f. Orn. 119, S. 412—420, 1978) hat die beiden Eier des Bonner Museums er-
neut vermessen, SCHÖNWETTERS Notizen über sie angeführt (s. auch SCHÖNWETTER
1929a u. KoEnıG 1932, S. 604—605) und aus den Krümmungsradien (Methodik!) die
Bestätigung für den ‚‚ovaten‘ Charakter der Aepyornis-Eier gegenüber den ellipsoiden
der Struthio-Eier gefolgert, der auch aus SCHÖNWETTERS Text (S. 3, 5 u. 31) her-
vorgeht.
Seite 34, 3. und 4. Zeile bei Aepyornis einfügen: Die undeutliche Trennung von Aepyor-
nis grandidieri (der übrigens seinen Namen nach einem Schalenstück erhielt) und
Ae. medius wird verständlich, da BRODKoEB (1963, S. 206) beide ‚‚Arten‘‘ unter Ae.
medius zusammenfaßt.
Am Ende als Absätze hinzufügen: Mullerornis spec. WETMORE vermutet in einer nur
1,80 mm dicken Eischale aus Tulear (SW-Madagaskar), die sehr feine Strukturen zeigt,
einen (erstmaligen) Hinweis auf Mullerornis-Eier (SAUER 1972, S. 16; S. 15, Fig. 9e).
Die im Alttertiär der Provence vor allem bei Saint Maurin, Becken von Aix, gefunde-
nen Eierscherben wurden zunächst „leichtfertig‘‘ Aepyornithiformes oder Dinor-
Nachträge zu Band I: Tinamiformes 185
nithiformes zugeschrieben (MARTINT, Umschau 61, S. 311f., 1961). Über ihre weitere
Geschichte siehe Nachtrag zu Seite 357.
Seite 35, 4. Zeile von unten bei Apterygidae nach ‚unterstützt‘ fortfahren: Anderer-
seits haben TyLER & Simkıss (Proc. Zool. Soc. London 133, S. 241, 1959) angedeutet,
wie aus Eiern mit bei Ratiten vorherrschenden, etwa Rhea ähnlichen, Typen durch Be-
schleunigung der frühen Schalenbildung, auf Kosten der späteren, Eier vom Typ der
Apterygidae und der Tinamidae, die beide nach JacoB (Verh. Dtsch. Zool. Ges. 77,
S. 69—85, 1984) wegen der Ähnlichkeit ihrer Bürzeldrüsenwachse zusammengehören,
entstehen konnten, und MEISE ‚erklärte‘ das einfache Porensystem der Kiwi-Eier im
Zusammenhang mit Einsparungen bei der relativen Schalenverdünnung in der Stam-
mesgeschichte dieser als Moa-Verwandte wohl ursprünglich größeren Vögel (Proc.
XIII“ Int. Orn. Congr. S. 122, 1963).
_ Nachträge zur Ordnung der Tinamiformes (Bd. 1, S. 39—46, 1960)
Seite 38, 5. Textzeile nach ‚,‚u. a.)“, einfügen: hellbraun (einige Orypturellus, Nothoprocta,
Nothura, Taoniscus, s. Liste), dunkelgraubraun (Nothura minor, Taoniscus, nach
KREUGER, briefl.).
Seite 39, 3. Zeile von oben nach ‚‚Zweispitz‘‘: Extreme für k gibt es bei den unten ange-
führten Eiern von De b. boucardi mit k = 1,16 und Nothoprocta o. ornata mit
(wohl abnormem) k = 1,55.
Nach 20. Zeile von unten hinter ‚1958)‘ fortfahren: Auf den äußeren Porenenden von
Nothocercus-, Rhynchotus-, Nothura- und vor allem Eudromia-Eiern wurden elektronen-
mikroskopisch durchlässige Pfropfen (Stopfen) nachgewiesen (auch bei Apterygidae),
etwas anders gebildete bei Jacana und ähnliche bei Rhea (BoARD & PERROTT 1979). Sie
werden einem vorher nicht berücksichtigten Typ der Schalenporen zugerechnet
[BoARD u. a., J. Zool. (London) 182, S. 251 — 265, 1977].
Seite 41, nach 14. Zeile von oben einschieben: 3 Eier von Tinamus major fuscipennis
Salvad. messen 59,2 —63,2 x 46,4—49,7 (HUBER, Proc. Acad. Nat. Sci. Philadelphia
84, S. 206, 1932), A= 614, B=-483mm, G = 79,058, k = 1,27. Nicaragua bis
Costa Rica (außer SW) u. W-Panama. (Eier aus Nicaragua).
Seite 42, 6. und 7. Zeile bei Orypturellus cinereus ergänzen: 2 weitere Eier, das 2. von
Einheimischen bestimmt, messen 53,9 x 35,0 bzw. 49,0 x 36,8 mm (H.-W. KoEPcKE,
briefl. 1984), g = 249 bzw. 239g, A=515, B=35,9mm, g=2,41s, d=
—= 0,22 mm, G = 36 (gewogen 35,4; 35,5) g, Rg = 6,7%, k = 1,43. Kombiniert mit
6 Listenmaßen, ergibt sich D,;, = 44,7 —53,9 x 35,0—40,4 = 2,16—2,77 8, A = 49,0,
B= 37,9mm, g = 243g, d = 0,22 mm, G = 38,5 g, Rg = 6,3%, k = 1,29. (Mus.
Hamburg: 2c/l Panguana nahe Fluß Pachitea, 9,37°S, 74,56°W, O-Peru, M.
KoEPCcKE coll.).
Vor 11. Zeile von unten zusetzen: 16 blaßhellbräunliche (bis gelbgraue) Eier von Cryp-
turellus soui modestus (Cab.) messen 40,5 —45,6 x 31,83— 33,3 mm (SKUTcH, Condor 65,
S. 225, 1963), A = 43,1, B = 32,6 mm, G = 25,3 g, k = 1,32. Costa Rica bis W-Chi-
riqui (Panama). (SKUTCH: 8/2 Costa Rica).
Ein nicht ganz ausgefärbtes Ei von Crypturellus soui poliocephalus (Aldrich) mißt
41,2 x 30,4mm (WETMoRE 1965, S. 22), G=21g, k = 1,36. W-Veraguas bis Rio
Bayano (Panama, pazifische Seite), Isla de Rey, Pearl Inseln. (Ei von Chepo).
Vor 3. Zeile von unten einfügen: 1 graubeige gefärbtes (verfärbtes) Ei von Crypturellus
undulatus simplex (Salvad.) mißt und wiegt 45,0 x 34,6 = 1,82 g (R. KREUGER, briefl.),
186 Nachträge zu Band I: Tinamiformes
d = 0,20 mm, G = 30 g (klein für diese Art), Rg = 6,1%, k = 1,30. SW-Guyana und
NO-Brasilien. (Kreuger: 1/1 Guyana).
3.—1. Zeile von unten bei Crypturellus undulatus yapura nachtragen: Ein 1984 blaß
graulichrosa gefärbtes Ei, O-Peru, mißt 54,2 x 41,6 mm (H.-W. KoEPCKE, briefl.
1984), g = 2,72 g, d = 0,20 mm, G = 50 (gewogen 47,97) g, Rg = 5,4%, k = 1,30.
(Mus. Hamburg: 1/1 aus c/4 Panguana, coll. M. Koepcke 1970). Kombiniert mit
2 Listenmaßen, ist D,;, — 53,6 x 39,1 mm, G = 45 g, k = 1,37.
Seite 43, nach 6. Zeile von oben einfügen: 10 Eier von Crypturellus boucardi boucardi
(Selater) messen 43,3 —49,0 x 37,1—42,2 mm (LANCASTER, Condor 66, S. 271, 1964),
A = 46,4, B = 39,9 mm, G = 40,4 g, k = 1,16 (sehr groß und schwer im Verhältnis
zu costaricensis). SO-Mexico bis Beliza (— Brit. Honduras) (Lancaster: Eier aus Brit.
Honduras).
Vor 12. Zeile von unten aufnehmen: 3 merkwürdig große, violettpurpurne Eier von
Orypturellus cinnamomeus soconuscensis Brodkorb messen 49,4—51,7 x 40,0—40,3 mm
(RowLeEy 1984, S. 82), A = 50,5, B = 40,2 mm, G = 44 g, k = 1,26. Pazifische Seite
von Oaxaca und Chiapas (S-Mexico) (Rowley: Ovidukt-Eier aus SO-Oaxaca).
Seite 44, vor 6. Zeile von unten bei Nothoprocta o. ornata größere Maße hinzufügen: 4 wei-
tere Eier messen 57,7 —59,7 x 37,3—38,3 mm, A = 58,7, B = 37,8 mm (JOHNSON
1965, S. 53), G = 46 g,k = 1,55 (!). Verbreitung auch in N-Chile [Johnson: 1/4 Huas-
co See (Tarapacä)].
Seite 45, nach 2. Zeile einfügen: 9 ziemlich hellbraune Eier von Nothoprocta curvirostris
peruviana Taczanowski messen 52,9—55,4 x 36,7 —38,8 mm (H.-W. KoEPrcke, briefl.
1984), A = 54,4, B = 37,9mm, g = 2,48—2,75, i.D. 2,651g, d = 0,22mm, G
— 40,0 g, Rg = 6,6 0/0, k = 1,44. Die 5 Eier eines vom 16. 6.—1.7. 1967 im Gehege
gezeitigten Geleges schwankten nur von 54,8—55,4 x 38,0—38,8 mm (KOEPCKE,
briefl. 1984). Peru S vom Huanaco (Nominatform: Ecuador vom Mt. Pichincha S)
(Mus. Hamburg: c/5 u. 1/4 Gehege, Lima, M. Koepcke coll.).
2 wie die von Nothoprocta curvirostris gefärbte Eier von Nothoprocta pentlandii ambi-
gua Cory messen 51,0—52,0 x 36,3—37,3 mm (H.-W. KoEPcKE, briefl. 1984), A = 51,5,
B = 36,8 mm, g = 2,15—2,28, i. D. 2,2298, d=0,20 mm, G = 36,7g (gewogen
36,6 u. 40,2 g), Rg = 6,0%, k = 1,40. S-Ecuador bis NW-Peru. (Mus. Hamburg: 1/2
Huacraruco, 7,19°S, 78,26°W, Peru, M. Koepcke coll. 1958).
Nach 5. Zeile aufnehmen: 36 braune ‚schokoladenfarbige, wie Porzellan glänzende“
(KorPrck& 1968, S. 228) Eier von Nothoprocta pentlandii oustaleti Berl. & Stolzm. (und
unbenannte Subspezies?) messen 43,0—54,7 x 32,5—37,9 mm (H-W. KoEPcke,
briefl. 1984), A = 48,7, B = 34,7 mm, g = 1,600 — 2,889, i. D. 2,081 g, G = 30,9 g. d
— 0,21 mm, Rg = 6,2%, k = 1,40. Zentral- u. S-Peru (Mus. Hamburg: Gehege-Eier
meist von einem aus den Lomas von Atiquipa, 15,47°S, als größeres Küken der dor-
tigen abweichenden Unterart erworbenen — vielleicht aber vom oustaleti-Bereich nach
Atiquipa eingebrachten, in Lima herangewachsenen 2, M. Koepcke coll.)
Die niedrigen Werte dieser Serie können entweder auf die Mischung aus zwei Unter-
arten hervorgehen, von denen die des erwähnten Lomas-Q noch nicht benannt, aber
anscheinend nicht kleiner ist (KOEPCKE, Bonner Zool. Beitr. 19, S. 234, 1968) und
Eier von der Größe 43,0 —50,3 x 32,5 — 35,0 — 1,600— 2,285 g (Ds = 46,6 x 33,9
— 1,902 g, d= 0,21 mm, G = 28,3 g, Rg = 6,7%. k = 1,37) legt. Dagegen lieferten die
aus klarem oustaleti-Bereich stammenden 9 Eier mit den Maßen 49,5 —54,7 x 35,3 bis
37,9 = 2,294 — 2,889 g (D,. = 52,2 x 36,6 = 2,547 g, d= 0,23mm, G = 37,1g, Rg
— 6,9%, k = 1,43). Oder, was wahrscheinlicher ist, die im ersten Lebensjahr abge-
legten Eier dieser Art sind, wie bei manchen anderen Vögeln, kleiner als später gezei-
tigte, so daß dadurch die Variationsbreite nach unten erweitert wird: Die ersten Ge-
Nachträge zu Band I: Sphenisciformes 187
lege der beiden Lomas-Q (Wildfang und F,-Generation) haben folgende Maße: 49,1
x 33,9 (D,) bzw. 45,0 x 33,3mm (D,),g = 1,873 bzw. 1,786 g, d = 0,19 bzw. 0,20 mm,
G = 29,7 bzw. 26,3 8, Rg = 6,4 bzw. 6,8%, k = 1,46 bzw. 1,35.
Ein braunes Ei von Nothoprocta pentlandii niethammeri Koepcke mißt 50,7 x 34,3 mm
(M. KoEpcke 1968, S. 233 u. H.-W. KoEPrcke, briefl. 1984), & = 2,28 g,d = 0,23 mm,
G=32g, Rg = 7,2%, k = 1,48. Lomas im Küstenbereich von Zentral-Peru. (Mus.
Hamburg: Lomas de Lachay, 11,19°S, M. Koepcke coll.).
7. Zeile nach ‚‚Kittl.‘“ hinzufügen: und wohl sanborni.
Nach 8. Zeile aufnehmen: 13 Eier von Nothoprocta perdicaria sanborni Conover mes-
sen 46,1—53,1 x 35,0— 37,9, A = 50,2, B = 36,5 mm (GooDALL u.a. 1957, S. 422;
JOHNSON 1965, S. 51, Foto), G=35g, k = 1,36. Zentral-Chile von Maule S bis
Llanquihue. (Eier aus der Gegend von Concepcion). — Die Maße unserer Liste für die
Nominatform enthalten wohl solche dieser Rasse.
Seite 46, nach 8. Zeile zusetzen: 10 Eier von Eudromia elegans patagonica Conover, 1950,
messen 56,1—58,1 x 38,9—39,9, A = 57,1, B= 39,4mm (JoHnson 1965, S. 56),
G=47g, k = 1,45. S-Argentinien von S. Neuquen bis Santa Cruz, angrenzendes
Chile. (Eier aus Chile).
Nachträge zur Ordnung Spheniseiformes (Bd. IS. 47—51, 1960)
Seite 48, 2. Zeile von unten bei den Relativen Eigewichten der Pinguine nach ‚14,0 g)“
fortfahren: Eine neuere Zusammenstellung von WArRHAM (1980 b S. 127), der nur nach
Abschluß der Mauser gewonnene Weibchengewichte gelten lassen möchte, ergibt aus-
geglichenere, d.h. mit der Theorie ‚‚besser‘‘ übereinstimmende Werte, wie aus der
folgenden, nach abnehmenden Weibchengewichten geordneten Tabelle hervorgeht:
Q-Gewicht inkg Form Rgin %
neu alt!) neu alt!)
20,0 32 Aptenodytes forsteri 2,3 1,3
11,5 En Aptenodytes patachonicus 2,6 .-
5,5 _ Pygoscelis papua 2,5 --
3,4 4 Pygoscelis adeliae 3,6 Sl
3,2 — Eudyptes chrysolophus 4,0 --
2,5 — Eudyptes pachyrhynchus 4,4 —_
2} _ Spheniscus demersus 4,7 _
1,9 — Eudyptes chrysocome filholi 4,9 —
1,0 — Eudyptula minor novaehollandiae 5,5 —
Die letzte Form wurde nach dem Gewicht bei ReıtLLy (1975) ohne Rücksicht auf das
Mauserende hinzugefügt, wodurch die Serie erwartungsgemäß mit dem größten Rela-
tiven Eigewicht beim kleinsten Pinguin endet.
Vor unterster Zeile bei Sphenisciformes als Absatz aufnehmen: Das Relative Schalen-
gewicht ist groß und schwankt in unserer Liste zwischen 9,0 und 14,2%, in einer Zu-
sammenstellung von WILLIAMS, SIEGFRIED & COoPER (1982, S. 166) dagegen zwischen
10,1 und 15,8%. Die Werte sind nicht vergleichbar, da es sich hier um Feuchtgewichte
der Schalen einschließlich Schalenhaut, bei uns um Trockengewichte handelt. Meist ist
t) Bd. I, S. 48. — RG wird noch einmal bei Zudyptes besprochen (s. Nachtrag zu Bd. I,
S. 50).
188 Nachträge zu Band I: Sphenisciformes
der Unterschied bei den 10 Arten 0 (!) bis 2,5, einmal 3,7%, was zur Zeit nicht zu
erklären ist; denn daß der Wassergehalt artlich so stark schwankt, möchte ich nicht
annehmen. Auffällig erscheint, daß eigene Wägungen für 11 erstgelegte Eier von
Eudyptes chrysocome moseleyi (Gewicht i. D. 71,6 g) ein höheres Relatives Feuchtscha-
lengewicht (15,8%) ergeben als für 13 Aptenodytes forsteri-Eier mit dem Durchschnitts-
gewicht von 469,7 g (15,7%). Dagegen dürfte das Relative Trockenschalengewicht in
unserer Liste mit 11,1: 14,2%, den wahren Verhältnissen näher kommen. Trocken-
schalengewichte fehlen bei WıLLıams u. a. Deren Überlegungen zur Bedeutung Rela-
tiver Schalengewichte neigen bei den Pinguinen dazu, die starken Schalen als Schutz
vor den Gefahren durch oft harten Untergrund, ferner durch Schwimmhäute und
schweres Vogelgewicht aufzufassen. Auf die Feststellungen an Feuchtschalengewichten
bei Procellariiformes, Pelecaniformes und Charadriiformes kann hier nur verwiesen
werden. Ausführungen über das Dotter-Eiweiß-Verhältnis in Beziehung zu verschie-
denen Nesthocker/Nestflüchter-Typen betonen zum Schluß die Abhängigkeit von
der Zeitspanne zwischen Schlüpfen und erstem Nahrungsbedarf des Jungvogels.
Seite 50, 7.—10. Zeile bei Pygoscelis papua ergänzen: Nach einer Aufstellung aus neuerer
Literatur und nach eigenen Maßen hat CoRDIER (1983, S. 151 u. 175) eine Übersicht
der oologisch-geographischen Größenverteilung gegeben. [WırLıams (1970, S. 285)
weicht etwas ab.] Für die Nominatform bedurften die Angaben SCHÖNWETTERS bei
Macquarie-Eiern keiner Änderung; doch sind die Riesenmaße aus OLIVER (1930, S. 67):
79 x 59,5 u. 80 x 59 mm, ob zu Recht (?), vernachlässigt. Westlich von Macquarie
werden die Eier der Nominatform immer größer:
Pygoscelis papua papua (unsere taeniata heute synonym)
Anzahl Brutort Durchschnitts- Frisch- Länge:
Länge mal Breite gewicht Breite (k)
in mm
10 Macquarie 63,5 x 52,9 100 g 1,20
52 Kerguelen u. Heard 67,6 x 57,2 124 g 1,18
(CORDIER u. a. 1983 bzw.
Gwynn 1953)
104 Crozet (Desrin u.a. 1972) 67,5 x 57,1 123 g 1,18
u. Marion (WILLIAMS 1980)
164 8-Georgien (STONEHOUSE 68,0 x 57,0 124 g 1,19
1970); 4 SCHÖNWETTER
50 Falkland Inseln (vor allem 69,9 x 59,1 129 g 1,18
PÄssLer 1933 u. SCHÖN-
WETTER)
Insgesamt
380 Gesamtbereich 67,9 x 57,2 126 g 1,19
Nach 10. Zeile aufnehmen: 61 Eier von Pygoscelis papua ellsworthi (Murphy) messen
63,9 —75,8 x 51,5—58,8 mm (Novartı 1978, CORDIER 1983, 2 Mus. Koenig, Bonn),
A = 68,9, B = 56,2 mm, G = 123 g, k = 1,23. S-Sandwich, S-Shetlands, S-Orkneys,
Antarkt. Halbinsel (Eier von hier, doch 2 S-Orkney-Eier im Mus. Koenig).
11.—12. Zeile bei Pygoscelis adeliae erwähnen, daß an Kap Royds 13 als dritte ihres
Geleges abgelegte Eier durchschnittlich nur 66,1 x 51,1 mm maßen (TAayror 1962,
S. 187). Sie wogen aber nach Wägungen 13,7, nach Berechnungen aus den Eimaßen
sogar 15,9% weniger als der Durchschnitt der summierten 32 ersten, 21 zweiten und
12 dritten Eier.
Nachträge zu Band I: Sphenisciformes 189
15.—4. Zeile von unten: Eudyptes s. Nachtrag zu 5.—4. Zeile von unten.
15.—14. Zeile von unten bei Zudyptes pachyrhynchus nachtragen, daß 255 weitere
Eier 65,4—73,5 x 50,0—56,8 mm, A = 69,5, B = 53,3 mm (WARHAM 1974) messen,
G = 107 g (gewogen 114 g), k = 1,30. Das 2. Ei (B-Ei genannt, was wegen Verwechs-
lung mit unserem B = Eibreite nicht übernommen wurde) war (mit einer Ausnahme)
i. D. um 20% schwerer als das 1.
Vor 13. Zeile von unten einfügen: 6 Eier von Eudyptes robustus Oliver messen 64,0
bis 75,5 x 49,5 — 57,5 (Ouiver 1955, S.73), A= 70,1, B=53,0 mm, G = 107g,
k = 1,32. Fünf ‚„B-Eier“ hatten i. D. 13,95% Volumen mehr als die Hälfte des Durch-
schnittsgewichts der 1. + 2. Eier zusammen i. D. (WARHAM 1975). Snares S von Neu-
seeland.
11.—10. Zeile von unten bei Eudyptes statt ‚‚crestatus crestatus (Müller)‘‘ (nach PETERS
19792, aber endgültig?): chrysocome chrysocome (Forster) u. moseleyi Math. & Ired.:
10 weitere Eier messen 70,7 x 52,5 mm (STRANGE 1982, S. 163). G = 110 g (gewogen
D; = 86,3 g). Rechte Spalte ganz neu: chrysocome: Feuerland u. Falkland sowie einige
Nachbar Inseln (Eier von Falkland Inseln); moseleyi s. nächsten Nachtrag.
Vor 9. Zeile von unten einfügen: 30 als 1. Eier abgelegte Eier von Eudyptes chryso-
come moseleyi messen 51,4 — 70,8 x 45,5 — 52,2, A=65,2, B=49,2mm; 30
2. Eier derselben Gelege messen 67,3 — 76,8 x 52,6 — 58,5, A = 73, B = 55,2 mm
(Wiırzıams 1980c. Auf Amsterdam ergab sich nach Zitat bei WırLıams Ähnliches:
1. Ei 63,2 x 49,7, 2. Ei 70,1 x 54,7 mm). G der ersten Serie für das 1. Ei 88,1, für das
2. 124,8, also das 2. Ei 11,7%, (nach StrassvoLD 17,8%) schwerer als das Durch-
schnittsgewicht des Eies im Gelege, das bei 69,1 x 52,2 mm 106,3 g beträgt. k = 1,32
(1. u. 2. Ei kaum verschiedene Gestalt). Rechte Spalte: Tristan da Cunha-Gruppe,
Amsterdam u. St. Paul. (Williams: c/2 Gough). Interessant ist, daß die kleineren
1. Eier mehr gefährdet sind als die hinter ihnen unter dem brütenden 9 liegenden 2.;
denn Wırrıams fand in Beuteresthaufen von Siercorarius skua 2/3 1. und 1/3 2. Eier.
9. u. 8. Zeile von unten bei Hudypies chrysocome filholi vorher crestatus f., erwähnen,
daß das Gewicht der nicht getrockneten Schale nach WirLıams u.a. (1982) i.D.
15,8%, der i. D. 71,6g wiegenden (frischvollen?) Eier betrug, wogegen unsere Liste
10,1% für die wie bei uns immer trockene Schale ausweist. 2. und 3. Eier hatten etwa
17% mehr Volumen bzw. wogen soviel mehr als der Gelegedurchschnitt [Gwyxn 1953
auf Heard bzw. Wırrıams (1980b)]. — 1. (kleine) Eier (s. STAHL 1975: 20 Eier 63,5 mal
47,3 mm), 79 g, fehlen bei uns ganz, 2. Eier (20 bei StauL: 70,4 x 52,5 mm) wiegen
109 9.
5.—4. Zeile von unten bei Eudyptes chrysolophus ergänzen, daß nach denselben
Quellen c/3 nicht vorkommt, und daß 2. Eier 24,3%, mehr Volumen haben bzw. etwa
23%, schwerer sind als der Gelegedurchschnitt (WArHAMm 1975, 8. 216).
Nachdem diese Nachträge geschrieben waren, hat Moucins sehr interessante Befunde
vom Crozet-Archipel (Ile de l!’Est) mitgeteilt (Oiseau 54, S. 2831—284, 1984). Obwohl
das nur 63%, des zweiten Gelege-Eies wiegende erste Ei bis zur Ablage des 2. Eies
oder wenige Tage darauf verschwindet, erweist es sich schlüpffähig wie das 2. Ei,
das allein bebrütet wird: Beim Unterschieben eines kleinen 1. zum 2. oder nur eines
1. Eies schlüpften i. D. 0,34 bzw. 0,76 bzw. (bei ungestörtem Bebrüten nur des
2. Eies) 0,83 Junge je Nest (in 31; 29; 29 Fällen). Beim Zweierversuch lagen die
Trümmer meistens des kleinen Eies noch zur Brutzeit im oder beim Nest. Als in
6 Fällen 2 Junge schlüpften, war nach 2 Tagen nur noch eins am Leben. Daß die Art
2 Junge aufzieht, hält Moucın für unmöglich. WILLIAMS & CooPEr (1984, S. 850):
Weil Eudyptes als einziger der mehr als 1 Ei legenden Pinguine nicht an, sondern weit
vor der Küste jagt.
Eudyptes ist die einzige Pinguingattung mit starker Gewichtszunahme im Gelege.
190 Nachträge zu BandI: Sphenisciformes
SLAGsVoLD u.a. (1984, S. 687) sehen darin einen biologischen Widerspruch, da Um-
gekehrtes zu erwarten wäre (s. auch Nachtrag zu S. 598 bei Apus apus), aber, wenn
die vielleicht morphologisch begründete vordere Lage des kleinen Eies bei der Be-
brütung denselben Effekt hat wie Abdrängung des kleineren 2. Jungen von der
Nahrungsquelle bei einigen Greifvögeln, könnte die Sicherung wenigstens eines Eies
(oder alle Eier ohne das letzte) die gemeinsame Funktion solcher Gelege sein.
Während nun bei Eudyptes chrysolophus (einschließlich Eu. chr. schlegeli) und Eu.
sclateri nur das 2. Ei bebrütet wird, sitzen bei den drei kleineren Arten, die meistens
nicht so weit in die Kälte vorgestoßen sind, die 2 auf beiden Eiern, bringen aber nur
ein Junges zur Selbständigkeit. Bei diesen Arten spart das @ (noch?) nicht so viel am
1. Ei (zugunsten eines relativ größeren zweiten); trotzdem war der Schlüpferfolg des
c/2 auf Est bei Eudyptes chrysocome filholi 1981— 1982 nur i. D. 0,67 je Nest gegen
0,83 bei Eu. chr. chrysolophus.-— MouGın (1984, S. 234—287) hat auch eine Liste der
Relativen Eigewichte aller Eudyptes-Arten zusammengestellt und gefolgert, daß der
Größenunterschied im Gelege als Folge des vergrößerten Schlüpfabstandes (bei der
Anpassung an extrem kalte Gegenden) zu verstehen sei. — Jedenfalls hat die Gattung
einen Sonderweg eingeschlagen. Die Relativen Eigewichte seien mit den Weibchen-
(bzw. Adult-)Gewichten und den Eigewichten der Moucın-Tabelle wiedergegeben
mit Zugabe verschiedener Auswertungen sowie der Form schlegeli als größtem Eudyp-
tes (mit Fragezeichen bei den Gewichten).
9-Gewicht | Zudyptes Eigewichte (G) und ihre Beziehungen Relative Ei-
in g nach untereinander gewichte (RG)
Mur GE: |&ı._|61.+G. G. |G,.+ &%.|1. |2. [1.+2.
1984 u. | a: & m, 5
BARRE Ei rege.)
u.a. 1976 ea Dr
2
8 % 1% s |8 % |% |%
4700 chrysolophus 103? |63? | 22,6? 163? | 133? 2,271 3,47. 12,82
schlegeli
4275 chr. chrysolophus 94 63: 1250 149 |122 2,2 8,0028
3965 sclateri 98 66 |21,0 149 |124 2,4 13:35 14
3390 pachyrhynchus 100 83 118,2 120 |110 2,9 | 35222
2970 robustus 3778-1226 125 |111 3,3 14,3 13,7
2800 chrysocome chryso-
come u. filholi 79 12 |14,1 109 92 2,8 |3,9 13,4
2620 chrysocome moseleyi | 88 75 |14,6 118 |103 3,4 |4,5 |3,9
Mit abnehmendem Körpergewicht werden die 1. und 2. Eier relativ schwerer, die
ersten um 45%, die 2. nur um 24%, aber das Gelege verlangt vom 2 durch diese Kom-
pensation etwa die gleiche durchschnittliche Leistung wie auch bei anderen Pinguinen,
z. B. um 3% bei Pygoscelis mit etwa 4 kg Gewicht. (Die Körpergewichte der Pinguin-
liste, S. 187, sind aus dort angegebenen Gründen viel kleiner als die bei Moucım.)
3.—1. Zeile von unten bei Megadyptes antipodes hinzufügen: Maße und Gewichte der
Eier waren nach Altersklassen verschieden [RICHDALE, A study of penguins of known
age. Dunedin (Otago Daily Times), 1949, S. 45—49, auch Wilson Bull. 61, S. 91—98,
1949]:
2 Jahre alt: 65,3—82,8 x 50,3—56,0 mm, G = 102—129g. D,;, = 75,4 x 53,3 mm,
G = 116,4 g.
!) Wieviel % ist das 1. Ei i. D. leichter als der Gelegedurchschnitt? (Bedeutung der Formel).
Nachträge zuBandI: Gaviiformes 191
3 Jahre alt: 72,5—83,5 x 53,5—58,8 mm, G = 113—144 g. Dy;, — 76,3 x 56,2 mm,
G = 130,7 9.
4 Jahre alt: 71,5—83,0 x 54,0—60,5 mm, G = 118-149 g. D,, = 76,7 x 57,0 mm,
G = 135,5 8.
5 bis über 14 Jahre alt: 70,0—83,0 x 53,3—61,5 mm, G = 120-159 g. Dy94 = 76,3
x 57,5 mm, G = 138,6 mm.
Bis zum 4. Jahr stieg besonders die Eibreite, und wenig später werden die Maximal-
gewichte erreicht. Die Durchschnittsgewichte steigen vom 7.—11. Lebensjahr, ver-
glichen mit denen vom 4. Jahr, signifikant um 4,6%. Alle Vögel gehörten zu der
Kolonie der Otago-Halbinsel 1936— 1948.
Das 2. Ei hatte im Durchschnitt von 296 Gelegen 0,28%, weniger Volumen als der
Durchschnitt der beiden Gelegeeier (RICHDALE, s. auch SLAGSVoLD 1984, S. 695).
Seite 51, 1.—3. Zeile bei Eudyptula minor novaehollandiae ergänzen, daß 295 weitere
Eier aus Victoria i. D. 54,9 x 41,9 mm messen (REILLY & BALMmForD 1975, S. 171),
G=53g. Kombiniert mit den 35 Eiern unserer Liste, ergibt sich A = 55,1,
B=420mm,G=54g,k = 1,31. [Reilly u. a.: c/2 (3?, selten 1)]. Phillips Island.
Nach 3. Zeile einschieben: 41 Eier von Eudyptula minor variabılis Kinsky & Falla
messen 52,4— 61,2 x 40,0—44,7,1. D. 56,4 x 43,1 mm (Kınsky 1960, S. 159),G = 588,
k = 1,31. S-N-Neuseeland, S-Neuseeland S bis Karamea u. Inseln Motunau. [Kinsky:
c/2(1), selten 3, Wellington].
4. u. 5. Zeile bei Zudyptula minor minor bemerken, daß die eben erwähnte Rasse
in der SCHÖNWETTER-Serie (mit auffallend kleinen Eiern) vertreten ist, wohl aber
Eier von iredalei: Math. und chathamensis Kinsky & Falla eingeschlossen sind. Rechte
Spalte: öredalei: N-N-Neuseeland; minor: Teile S-S-Neuseelands (außer Bereich von
E. m. albosignata) u. Stewart sowie andere Inseln; chathamensis: Chatham Inseln.
8.—9. Zeile bei Spheniscus demersus ergänzen: Von 140 weiteren Eiern maßen die
zuerst gelegten 62,1— 76,0 x 47,2—55,9, die Zweiteier des Geleges dagegen 54,1 bis
72,8 x 48,2—55,8, i. D. 69,6 x 52,1 für das 1., 67,7x 52,0(!) mm für das 2. Ei,
Schalengewicht g insgesamt 10,1—13,6, D; = 11,8g (WıILLIAMmS & ÜooPER 1984,
S. 842 u. 843), G = 103 bzw. 100 g (gewogen D;, = 107, D,; = 105 g). Das 2. Ei war
also 1,5% leichter als das Durchschnittsei des Geleges, das 101,5 g wog. (Aus 40 zu-
sammengehörigen c/2 Gelegen ergab sich sogar 0—12g Gewichtsunterschied,
D;o = #;6 g Mehrgewicht des Ersteies). Nach Kombination mit den 50 Eiern unserer
Liste, die z. T. auf GROEBBELS (1937, S. 147 nach KroHn) beruhen, und mit 58 Eiern
nach RoBeErts (1957, S.2) erhält man für 248 Eier die Maße (54,1—)61,0— 76,4
x 47,2—55,9 = 10,0—17,0g, A= 687, B=521mm, g=12,2g, d = 0,55 mm,
1020, Rg —_ 121%, &— 1,32.
Vorletzte Zeile ergänzen: 75 weitere Eier von Spheniscus magellanicus messen
68,3— 81,6 x 52,7—59,0 (ausnahmsweise klein: 62,0x505)mm, A= 74,9,
B = 55,3 mm (BoswELL & MaAclIveEr 1975, S. 289), G = 129 g (gewogen, sogar bis
3 Tage alte Eier, 115—145, einmal 162g). — Warum sind die Eier unserer Liste
soviel kleiner? (Päßlers Chile-Serie?).
Am Ende aufnehmen: 9 Eier von Spheniscus mendiculus Sundevall messen
60,6—66,0 x 46,8 x 49,8 mm (LEVEQUE, Alauda 32, S.5—44, 1964), A = 63,6,
B=482mm,G=81g,k = 1,32. Galapagos Inseln.
Naechträge zur Ordnung Gaviiformes (Bd. I, 8. 52—53, 1960)
Seite 52,7. bis1. Zeile von unten nach PALmEr 1, 1960, S. 196; ANDERSON u.a. 1970: Gavia
arctica viridigularis (G 123g) u. Art pacifica (Sibirien bis Baffinland) (— 92g) ; Fur
1982, S. 202, beides 20 bzw. x Maße nach O-Sibirien, Gewicht errechnet, Hrsg.
192 Nachträge zu BandI: Podicipediformes
Seite 53, 3. Zeile bei Gavia immer immer erwähnen, daß 32 1961—1969 gesammelte
Schalen aus Ontario 19%, weniger wogen als 69 vor 1947 gelegte (ANDERSON &
HıckEy, Proc. XV Int. Orn. Congr., 1972, S. 525). Trotz dieser mit dem DDE-Gehalt
positiv korrelierten Verdünnung der Schale wurde in NO-Saskatchewan keine Ände-
rung im Bruterfolg festgestellt (Fox u. a., Ornis Scandinavica 11, S. 243—248
1980).
Sehr vielenordamerikanische Sammlungen maßen und wogen 302 Eischalen in 7 (hier
bei mir in3grobgegliederte) Areale. In Washington bis Manitoba wurden durchschnitt-
lich kleinere Eier ermittelt, größere einerseits in Alaska, andererseits weitere östlich, _
besonders in Island und Grönland — für die kleinen im Durchschnitt 80 Eier 87,3 x 54,5
— 14,5g, dagegen Alaska D,, = 88,3 x 57,3 = 16,8g größere, noch größere von Minne-
sota ostwärts D,9,:90,4 x 56,8 = 16,4g. Alle302 Schalen maßen und wogen 89,4 x 55,9
— 16,0 g (kombiniert ausden Gruppen in D. W. AnDERSsoN, briefl., nicht veröffentlicht).
Die 100 SCHÖNWETTER stammen wohl meistens vor langen Jahren vor 1940 und aus
dem östlichen Areal, u. a. Hantzsch-Sammlung und Britisches Museum, weniger aus
Amerika. Schwerere Schalen siehe oben. Im Gegensatz die Schalendicke etwa
0,63g mm (D. W. AnDERSoN u. a. 1970, S. 353), weil sie Eier mit den Schalenhäuten
mit gemessen haben. Alle 302 frischgewogenen, errechneten Eier: 155g (nach den
3 Arealen 144; 161; 162g) und ein Relatives Schalengewicht (Rg) 10,1; 10,4; 10,1 %
gegenüber 10,8% bei SCHÖNWETTER.
Nachträge zur Ordnung Podieipediformes (in PETERS 1931 Colymbiformes genannt)
(Bd. I, S. 54—57, 1960)
Seite 55, 9.—11. Zeile bei Poliocephalus ruficollis javanicus [in PETERS 1979? Tachybap-
tus r. vulcanorum (Rensch) mit der Verbreitung Java bis Timor, Kai Inseln] ergänzen:
Statt „9“: 23; statt „24,1“: 23,1; nach „26,2“: = 0,82—1,02g (HELLEBREKERS &
HooGERWERF 1967, 8.5), A=353, B=245mm, g=0,90g, d = 0,18 mm,
G = 11,0 g, Rg = 8,6%, k = 1,44.
Seite-56, nach 5. Zeile von oben einfügen: 40 Eier von Poliocephalus poliocephalus
cloatesi (Math.) messen 36,0—43,0 x 25,0—29,0 mm, gewogen i. D. 16 g (SERVENTY &
WHITTELL 1967, S. 102), A = 40,0, B = 28,0 mm, G = 16,5 g, k = 1,43. W-Austra-
lien (in PETERS 1979? syn. Nominatform). (Eier von Lake Grace und Carnarvon).
6. u. 7. Zeile von oben nach SCHÖNWETTERS handschriftlicher Notiz Angaben über
4 kleinere Eier von ‚‚Colymbus rolland‘‘, jetzt Rollandia rolland rolland (Qu. & G.), hin-
zufügen: 38,4—41,0 x 27,8—28,7 = 1,65—1,93 g, A = 39,6, B = 28,3 mm, g = 1,77g
(R. KREUGER, briefl.), d = 0,26 mm, G = 14,7 g, Rg = 10,0%. Falkland Inseln.
Nach 11. Zeile einfügen: 19 gelblichweiße Eier von Podiceps gallardoi Rumboll messen
43,4—49,3 x 30,3—32,6 mm [DE LA PENA 1986a, S. 27, u. PENA, briefl. (nach A. DE
JoHson, briefl.)], A = 46,4, B= 31,5 mm, G = 24,1 g, k = 1,46. Patagonien (S-Ar-
gentinien). (c/2—3 Santa Cruz).
14.—15. Zeile bei Colymbus (recte Podiceps) nigricollis nigricollis ergänzen: Die 405
zum Teil wohl doppelt gezählten Eier, die MAKATScH (1976, S. 31) für Großbritannien,
Schweden und Mitteleuropa anführen kann, messen wie die 250 unserer Liste, die
sicher zur Hälfte in voriger Serie enthalten und etwa gleicher Herkunft sind, etwas
weniger als (GORDIENKO, Ornitologija, 16, S. 33—41, 1981) 290 Eier von N-Kasach-
stan (Naurumsker Seen im obersten Tobol-Einflußbereich), MAKATSCH 43,5 x 29,9,
bei uns 43,8 x 30,2 mm (bei PRINZINGER, Der Schwarzhalstaucher, 1979, S. 100,
43,8 x 30,0 mm, G = 20,7 g, für 211 weitere mitteleuropäische Eier) — alles gegen
44,4 x 30,4mm, G = 21,7g in Kasachstan. Aber noch größeren Durchschnitt er-
reichen die Eier im nördlichen Kaukasus-Vorland.
A
“ Herbert Klug
Sn
Bau und Funktion von Zellen
. Eine Einführung in die medizinische Zellbiologie
1980. IX, 314 Seiten — 138 Abbildungen — 8° — 22,— M
| Bestell-Nr. 7627580 (6558)
Unter Anwendung biophysikalischer, biochemischer und morphologischer
Methoden und Techniken sind in den letzten Jahren umfangreiche neue
Erkenntnisse im Bereich der Zellbiologie gewonnen worden, die sich
sowohl auf die Struktur und die Funktion der normalen Zellen als auch
auf ihre funktionell-morphologischen Veränderungen unter pathologi-
schen Verhältnissen beziehen, deren Kenntnis nicht nur diagnostisch
bedeutsam, sondern auch für die Erforschung der Pathogenese einer
Erkrankung wesentlich ist.
Bitte richten Sie Ihre Bestellungen an eine Buchhandlung
AKADEMIE-VERLAG 6
DDR - 1086 Berlin, Leipziger Str. 3-4 °
Hetmeegeben von L. v. Bertalanfty 1 W. Bir R. Laue
«
2. bearbeitete und erweiterte Auflage a
DER 1977. VIII, 157 Seiten — 27 Abbildungen — 7 Tabellen ze
FREE, Leinen 35,— M ;
28 Bestell-Nr. 762 228 8 (6336)
| Diese Arbeit, hat eine wesentliche Eigenschaft lebender Some
RR: Inhalt, der in den 30er Jahren von Ludwig von Bertalanffy &
Ki wurde,
Bi. Ausgehend von der allgemeinen Eigenschaft des ne
führt die biophysikalische Modellierung biologischer Systeme zu qua a sl
titativen Aussagen über den Organismus. Die Bedeutung und Anwen- ker
dung der Erkenntnisse wird an zahlreichen Beispielen aufgezeigt. 1% #%
Ha
Bitte richten Sie Ihre Bestellungen an eine Buchhandlung
5 AKADEMIE-VERLAG
ER DDR-1086 Berlin, Leipziger Str.3—4
"ISBN 3-05-500152-4
_ \ 04 = r cG en;
< a S < - .= Pr zz
x — EN e.4 c & 7. 7 -
= oO N = (6) eh) o
er z Be“ = iz >
IaV4917 LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLINS SI1IUY
er zZ u = Er ze. =
@ = -@ = = N e)
B) z Eu = 2 b
= Ey = = > Fe
= m GG, = = Er) a
m > ZA m on m (7
STITUTION NOILNLILSNI NVINOSHINS SI1YVUAIT LIBRAR I ES „SMITHSONIAN INSTITL
© ke TE z.
N = =: = Pr: < & x
a LG 5 T_ 5% we. z
a a; = 2 n a: oO ..3 °
o Gp: L o/ T : 2
2 GM: = E Ze =
> KG = > > x 5 =
= zZ - 77) > [77] I -- 7) |
Iuvuaı LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI_NVINOSHLIWS S31UW
= zZ > IE 172) |
Z = 7 = 7 x ww
S = I x = N 2
= _ >= ee —_ . ge m
STITUTION_ NOILNLILSNI _NYINOSHLINS_S31UV4917 LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITL
= E= = zZ m = r
> = = = = 2 2
= > 2 > = >
S r . an” = .
z 5 = 2 z >
I4uvV4817
TITUTION NOILNLILSNI_NVINOSHLINS SI31IYUYYAIT LIBRARIES SMITHSONIAN
N
ER
SS
SMITHSONIAN
G
9,4
NVINOSHLIWNS
SMITHSONIAN
NVYINOSHLINS
SMITHSONIAN
wu z 1 z Ä
x = x =.
< = uk a
X z x S
cm ° er 5
Ei ze = 2
I4YV4811 LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLIWNS
s3l4UVYy911
INSTITUTION
SJIUWYEII LIBRARIES SMITHSONIAN
.
TITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLIWS
x
NVINOSHLINS S314VY 4817 LIBRARIES
NVINOSHLIWS S31UVYI17
SMITHSONIAN
PG
dB
NVINOSHLINS
Ss
SMITHSONIAN
“
Iuvagı) LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NVINOSHLIWS
NOILNLILSNI
LIB RAR IES
NOILNLILSNI
LIBRARIES
NOILNALILSNI
ex
STITUTION NOILNLILSNI NYINOSHIINS SI3I4MYMAII TIRRARIER— CMITHENNIAN
LIBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI NYVINOSHLINS SI31UW
NOILNLILSNI
LIBRARIES SMITHSONIAN
z
7)
ei
rt
NVINOSHLIWS
INSTIT
s31YU%
INSTITUTION
ae
INS T
s31?
vs ER=- U
= x =
= CE =
= = S
fe) == fe)
2 a z
IBRARIES SMITHSONIAN INSTITUTION NOILNLILSNI
z =
© = ©
F =: =
= > E
on = n
z z
OILNLILSNI S314V4Yg11 LIBRARIES
z e = Be
< „< IN.
= = ‘2 N
E = N
ö [77] z [77) *
IBRARIES SMITHSONIAN _ INSTITUTION NOILNLILSNI
wu .Z m
== ee =
= x
= 2 = <
ie E ac
= 3 E
ar = Er,
ILNLILSNI NVINOSHLIWS 53 IUV4g E LIBRARIES
% oO u
I) N = 0)
e.) N = 2
N =
a N N F= Ze
m ID + m
[7 = 0)
BRARIES SMITHSONIAN INS EITE TION BOJINILESN
5 < m =
| \ =: fe) T
N \ 3 — S 5
N N zZ = 2
NN — — ==,
AS = = vn >‘
77) : 2
DILNLILSNI NVINOSHLINS S314V4817 LIBRARIES
NOILNLILSNI
LIBRARIES
IBRARIES SMITHSONIAN
INSTITUTION
S3IYVYIIT
OILNLILSNI NVINOSHLINS
=
.<
ga ’ r
PG
77:
07 =
102)
IBRARIES SMITHSONIAN
e =
z .“
2 =
=,
c =
= =)
N Wet u
NVINOSHLIWS
NOILNLILSNI
INSTITUTION
SMITHSONIAN
INSTITUTION NOILNLILSNI
S31UVYaII_ LIBRARIES
N
%
INSTITUTION NOILNLILSNI
LIBRARIES
SMITHSONIAN
NOLLNLILSNI
[02 ) zB
> x
<<
C X
= es
oO BE
4 ES |
SIIUVYSII LIBi
3 z =
co = &
I Ps)
> = >
z = 2
[72]
n z =
[47]
< < <
— = =
ae
£ 2 Z
= E 3
> = a
[73] = =
NVINOSHLINS S314V4911
SE 0 o 3
Zur \ N 3
= I < =
N -
[e) | == [@)
= SS z
SMITHSONIAN INSTITUTION NOIL
= = =
oO % 0 °
m re m
= — =
Br = =
z = =
NVINOSHLIWS S31UVYAIT LIBF
zZ G < ”
3 u:
z =
e) ge
2 = &
= =
Fu2 w
SMITHSONIAN INSTITUTION NOIL
Gi
E73
n. wT
NVINOSHLINS S31UV4alT LIBI
NOILNLILSNI
LIBRARIES
SIJ14Y4911
INSTITUTION
s3ıyv4gı7 LIB
NVINOSHLINS S314Y4EI1_ LIBRARIES
NVINOSHLINS
NVINOSHLINS
LIBRARIES SMITHSONIAN
NOILNLILSNI
a abe
wer
en
wu
ve
Kun
SMITHSONIAN INSTITUTION LIBRARIES
weten
Bus ven
3 9088
Wehe a LEITER
ra ne
EETeree CR,
Se ENER
Br er
wu.
vr.
00725 5508
weni urn
ern nn
“wre
wur
ven
uw.
neun
ver n
wre
wnwan
wur
Vega du ta
wu.
Vu
ren dun
Rue
rer
Ve LEN
eg
LE LIE
uam
x
rg
BE rauen
Be
wre.
rn
wre
Ve
II EIDENER >
ver
www
an kunn
Sunwerereen
RT ET
Eon
Rue ENTER RW
VRNTERTRET SUITE BUNT
an DD UT BIST ie
NILTE LIEDER EReNER
vu
verwen
ran In
Das are
u
[PEN
Deren
TEE No
DA RER
. . D * E u. Verne “
. . ‚ [urer " Dar er
. vr wir wo vr in “ re . vn
vor v D . . . . . rat rürree de vw...
v ern nen EEE nn pe ‘ es
. w... w.r . .. . ee
. x “ wu. oo. a EL e SLRCRE,
ER re .. u were DR ae Ze rapcae
D . vr. n er 5 “s gene a rn werner au u use
- u ’ v. Ve ne nn “ sera were ern wu.
. . F D v “ sr x vr D Rue rn ee ee ame
b .. a en gr en r “ EEELEERIPF ER
. nee . “ f ‘ vera rer menerinie
“ z . ben a DE a Se er are PR ERe PEN
. ‚ ‚ ‘ . . or. vr “ D ’ ILL RD ET EePH Eee eRBerTn
w. wi « vr ee DL KL PONTE He
er. vw. en “r Er
’ B D wir . .. ne pe
x " N . . S ar A enge
b en an he ven
‘ — De n Bea EEE ir Pen
’ * . x ver D sr
oh ’ D ru B
v 5 ee [2 en 2 x