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From the Library of
J, M. ALDRICH

MONOGRAPHIE

DES

CÉCIDOMYIDES D'EUROPE ET D'ALGÉRIE

(planches 15 à 44)

Par L'ABBÉ J.-J. KIEFFER

PROFESSEUR AU COLLÈGE ST-AUGUSTIN, A BITCIE.

Aucune des familles dont se compose l’ordre des Diptères n’a été l'ob-
jet de travaux aussi nombreux que celle des Cécidomyides. Si l’on ne
tenait compte que de leur apparence extérieure, ces petits mouche-
rons dont la taille ne mesure généralement qu'un à trois millimètres,
parfois même moins d’un millimètre, et atteint rarement six millimè-
tres (Clinorhytis Kielf. et Hormomyia H. Lw.), pourraient peut-être
nous sembler insignifiants ; mais si l’on considère les formes si variées
des minimes vermisseaux qu'ils représentent à l’état larvaire, où encore
les curieuses excroissances ou galles produites sur les plantes par la
plupart d’entre eux, ou enfin les dégâts considérables, parfois même
les véritables désastres causés à l’agriculture par d’autres, on compren-
dra qu'ils aient depuis longtemps attiré sur eux lattention des natu-
ralistes.

Il faut remonter bien haut à travers les temps pour arriver aux plus
anciens représentants des Cécidomyies qui soient parvenus à notre
connaissance. M. le docteur F. Meunier vient de découvrir dans le
copal des tropiques et dans l’ambre de la période tertiaire des repré-
sentants des genres Diplosis H. Lw., Cecidomyia H. Lw. et Campylomyza
Meig.; dans l’ambre seul, Cecidomyia conjuncta Meun. et spectabilis
Meun. [487 (!), p.198 et 488, p. 161]. Auparavant déjà, H. Loew avait
signalé dix-huit espèces de Cécidomyies trouvées par lui dans lambre
et se répartissant de la facon suivante : Cecidomyia H. Lw., plusieurs
espèces dont une est nommée Cecid. minutissima H. Lw., les autres
sans dénomination; Diplosis H. Lw.; Asynapta H. Lw., trois espèces;
Epidosis incompleta H. Lw.; Dirhiza H. Lw.; Campylomyza Meig.,
cinq espèces, dont l’une reçoit le nom de €. monilifera H. Lw ; entlin
une Hétéropézine douteuse, Honodicrana terminalis K. Lw. [403, p. 32).

C’est également pendant la période tertiaire que les feuilles de Ju-

(1) Les nombres entre crochets indiquent le numéro sous lequel on trouvera
le Litre de l'ouvrage, au chapitre « Bibliographie »,

Ann. Soc. Ent. Fr., LxIxX, 1900. 12

182 J.-J. KIEFFER. (2)

glans acuminata Braun portaient des galles arrondies, découvertes ré-
cemment dans la lignite et considérées par von Heyden comme dues à
une Cécidomyie que cet auteur appela Cecidomyia dubia Heyd. [230,
p. 80, pl. X, fig. 4].

Un autre auteur, Heer, à observé sur les nervures des feuilles fos-
siles de Populus n. sp.? des galles qu’il attribue à une Cécidomyie,
nommée Cecidomyia Bremii Heer [220, p. 395, fig. 322].

Une autre espèce, Mikiola fagi, dont les galles sont communes dans
toute l'Europe sur les feuilles du Hêtre, aurait existé dès l’époque plio-
cène ; c’est du moins ce que nouslisons dans un article de M. Marty [452]
intitulé : « De l'ancienneté de la Cecidomyia fagi. » L'auteur y repré-
sente une fouille de Fagus pliocenica et ajoute « qu’elle montre avec
la plus grande netteté le petit trou circulaire et le renflement du pé-
doncule d’une galle qu'il ne peut rapporter qu’à celle de la Cecidomyia
fagi ».

La plus ancienne mention qui ait été faite d’une galle de Cécidomyie
remonte au premier siècle de l'ère chrétienne. En parlant du Hêtre,
Pline l’Ancien fait la remarque suivante : « Folium fagi... media parte
plerumque gignens superne parvulam baccam viridem, acumine acu-
leatam » (Historiarum mundi liber XVI, 7). Cette « baie verte, à som-
met terminé en pointe, qui se forme le plus souvent sur la partie mé-
diane du dessus des feuilles de Hêtre » est évidemment la galle de
Mikiola fagi. Au xvi°, au xvue et au xvin siècle, Clusius [64], Malpighi
[435], Réaumur [587] et d’autres signalèrent un certain nombre de
galles produites par des Cécidomyies, mais ils n’eurent pas connais-
sance, Où du moins ne firent pas mention des auteurs de ces déforma-
lions. Réaumur décrivit cependant quelques larves et signala l'organe
appelé spatule sternale. Linné donna la première description de l'insecte
à l’état parfait. Parmi les Diptères décrits par lui, les six suivants
paraissent être à rapporter à la famille qui nous occupe : Tipula juni-
perina, persicariae, palustris, longicornis, pennicornis et incarnatu.

Quant à la place qu'on devait assigner aux Cécidomyies, les
anciens auteurs ne s’accordaient guère. Linné, De Geer et Schranck
les classaient dans le genre Tipula, Geoffroy les rangeait dans son genre
Scalopse, et Fabricius les plaçait parmiles Chironomus. Ce ne fut qu’en
1803 que ces petits insectes purent être admis à former un genre à
part, auquel Meigen donna le nom de Cecidomyia, C'est-à-dire mouche
de galle (4nztôoç pute). Deux ans plus tard, Latreille créa pour une es-
pèce le genre Oligotrophus. En 1818, Meigen ajouta les genres Lasiop-
lera et Campylomyza, auxquels vinrent bientôt s’adjoindre Lestremia,
de Macquart [428] et Catocha, de Haliday [199]. Rondani établit plu-

(3) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 183

sieurs nouveaux genres en 1840, et les groupa dans deux familles, qu'il
appela Cecidomyinae et Lestreminae, en admettant dans cette dernière
des Sciarides et des Bibionides. Zetterstedt [823 et 827] ne tarda pas à
réunir ces deux familles en une seule, qu'il désigna du nom de Cecido-
myzides, tandis que H. Loew [402] les nomma plus tard Tipularia
gallicola. Schiner [661] changea ces dénominations en celle de Cecido-
myidae, ajouta aux Cecidomyinae et Lestreminae de Rondani, les Hete-
ropezinae Schin., en considérant ces trois groupes comme sous-fa-
milles des Cecidomyidae. Les Cécidomyies occupaient désormais le rang
qui leur revenait.

Tantae molis erat condere gentem !

Néanmoins, malgré le grand nombre de publications dont ces in-
sectes furent ensuite l’objet, malgré les essais de Monographie tentés
successivement par Bremi [50], H. Locw [402] et Winnertz [816], mal-
oré l’utile et laborieux Synopse de Bergenstamm et P. Low [22], leur
étude faisait encore peu de progrès, à tel point que la plupart des es-
pèces décrites sans indication de leurs galles ou de leur genre de vie
sont et demeureront toujours énigmatiques. Grâce aux observations
publiées successivement par L. Dufour, Laboulbène, N. Wagner, Mei-
nert, von Osten-Sacken, Fr. Low, Karsch, Targioni-Tozzetti, Riley,
Mik, Wachtl, Lintner, Fr. Thomas et surtout Rübsaamen, il est dé-
sormais possible de reconnaitre une Cécidomyie d’après une diagnose
et sans connaitre ses mœurs. Mais un vaste champ demeure encore ou-
vert. Un diptérologiste bien connu, H. Loew [402] écrivait à ce sujet :
« Si l’on voulait découvrir et observer toutes les Cécidomyies d’un
pays. la vie et le travail d’un homme ne suffiraient pas. » La présente
Étude, résultat de quinze années d'observations, n’a donc pas la préten-
tion d’être complète. Nous n’ignorons pas qu'il reste encore bien des
espèces à découvrir, surtout au Sud et à l'Est de l’Europe, ainsi qu’en
Algérie, régions relativement peu explorées. Faire connaître les Céei-
domyies découvertes jusqu’à ce jour, en rendre létude plus facile et
leur attirer par là de nouveaux observateurs, tel est le but de ce tra-
vail. Enfin glorifier lAuteur de la nature, dont la grandeur ne se ma-
nileste pas moins dans ces êtres infimes que dans ses créatures les plus
sublimes, telle est la fin dernière que nous nous sommes proposée
dans cette étude, — Creavit Deus in cœlo angelos, in terra vermiculos ;
nee major in illis, nee minor in istis (S'AUGUSTIN).

—

184 J.-J. KIEFFER,

IRE PARTIE
NOTIONS GÉNÉRALES SUR LES CÉCIDOMYIES.

Avant d'aborder la description des espèces en particulier, nous pré-
senterons d’abord un aperçu de la Bibliographie, puis nous traiterons
des caractères généraux des Cécidomyies : des dégâts qu'elles occasion-
nent et de leurs parasites ; de leur élevage et de leur conservation; enfin

nous terminerons par l'exposé de la classification.

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248. KALTENBACH: 1874. Die :Pflanzenfeinde aus: der Klasse der Insec-
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249. KARSCH (A,). ). 1855. Aus dem Leben einer Mücke | (Natur ne Of

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250. Karscn (F.). 1877. Revision der Gallmücken. Dissert. Zur Erlain-

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200

253.

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Kansen (F.). 1881. Eine neue Cecidômyia aus der Umgegend Ber-
lins, (Berliner Ent. Zeit., p. 227-231).

4. — A887. Uchber eine Cecidomyide aus den Rhizomorphen des

Kobhlenreviers bei Burgk ï. Sachsen. (Ent. Nachrichten, Berlin,
p. 198).

254 bis. — 1889. Ein neucr Feind der Rosencultur. (Ibid., p. 58).

298.

299.

260.

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zeugende Thiere. (Pflanzenleben, p. 520-546).

>. KERTESZ. 1898. Asphondylia Rubsaameni n.sp.(Termész. Füzetek,

t. XXI, p. 241-244, pl. I-IT).

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richten, Berlin, p. 200-205, 243-249, 262-268, 310-314)

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. — 1889. Neue Beiträge zur Kenntniss der Gallmücken. (Ibid.,

p. 149-156, 174-176, 183194, 208-219).

—!— ZWèi neue Gallmücken. (Wienér Ent. Zeitung, p. 262-26%.

. — 1890. Ueber Gallen und Gallmücken aus Blüthenkopfen vers-

chiedéner Compositen. (Entom. Nachrichten, Berlin, p. 27-32 et
36-38).

. — — Die Gallmücken der Tilia-Arten. (Ibid., p. 193-197).

3. — — Die Gallmücken des Horn-Klee’s (Wiener ent. Zeitung,

p. 29-32).

269. — — Die Gallmücken des Besenginsters. (Ibid., p. 133-138).

(21)

270.

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zool. bot. Ges. Wien, p. 197-206).

271. — 1891. Die Zoocecidien Lothringens. Fortsetzung. (Ent. Nach-
richten, Berlin, p.220-224, 230-240, 252-256).

272. —- — ur Kenntniss der Weidengallmücken. (Berliner Ent.
Zeitschr., p. 241-258, pl. IX, et 4 fig.).

273. — — Mittheilungen über Gallmücken. {Hbid., p. 259-266; 7 fig.).

274. — — Les Diptérocécidies de Lorraine. (Feuille des Jeunes Natu-
ralistes, Paris, p. 181-192 ; 208-215.)

2795. — 1892. Beobachtungen über Gallmücken mit Beschreibung ei-
niger neuen Arten. (Wiener ent. Zeitung, p. 212-224, pl. [).

276. — — Die Zoocecidien Lothringens. 3. Fortsetzung. (Ent. Nachr.
Berlin, p. 43-46, 59-64, 73-80).

277. — 1893. Troisième Contrib. à la Faune et à la Flore de Bitche.
(Bull. Soc. Hist. nat. Metz, p. 1-34).

278. — — Diplosis cilicrus m. (Ibid., p. 35-37).

279. — — Ueber cinige in Lothringen gesammelle Cecidien. (Ent.
Nachr. Berlin, p. 21-24).

280. — 1894. Sur le rôle de la spatule sternale. (Ann. Soc. ent. Fr..
p. 30-44).

281. — — Sur le groupe Epidosis (Ibid., p. 311-350, pl. 4 et

282. — — Trois nouveaux genres du groupe Diplosis (Bull. Soc.
ent. Fr., XX VIN).

283. — — Communication sur le genre Octodiplosis Giard. (Ibid.,
DCE).

284. — — Note préliminaire sur le genre Campylomyza. (Ibid.,
P. CLXXV-CLXXVI).

2895. — — (Genres nouveaux du groupe des Diplosis. (Ibid..
P.-CCRxxX)

286. — — Uecber die Heteropezinae. (Wiener ent. Zeitung., p. 200-
242; pl. 1):

287. -— — Neuer Beitrag zur Kenntniss der Zoocecidien Lothringens.
(Ent. Nachr. Berlin, p. 295-298).

288. — — Les œufs des Cécidomyies. (Ann. des Sc. nat. Rouen, p. 9,

10, 15-16, fig.).

202 J.-J. KIEFFER. (22)

289. Kigrrer (J.-J.). — Description de quelques larves de Cécido-
myies, (Feuille des Jeunes Naturalistes, Paris, &| XXIV, p. 83-
88, 119-123, 147-152, 185-189, avec 23 fig.)

290. — 1895. Beobachtungen überdie Larven der Cecidomyinen. (Wie-
ner Ent. Zeitge., p. 1-46).

291. — — Essai sur le groupe Campylomyza (Soc. Amis Sc. nat.
Rouen (inachevé), — Miscellanea Entom. Narbonne, p. 46-47, 56-
63, 73-79, 91-97, 109-115, 129-433, pl. III et 9 fig).

292. — — Ueber Papillen der Gallmückenlarven (Wiener ent. Zeitg.
p. 117-126).

293. — — Ueber moosbewohnende Gallmückenlarven. (Ent. Nachr.
Berlin, p. 113-123).

29%. — — DieZoocecidien Lothringens , VI, Fortsetzung. (Ibid. p. 171-
176).

295. — — Beobachtungen über die Nymphen der Gallmücken. (Wice-
ner ent. Zeitg., p. 266-270).

296. — — Les nymphes des Cécidomyies. (Feuille des Jeunes Natura-
listes, Paris, p. 164-168 et 9 fig.).

297. — — Observations sur les Diplosis et les Oligotrophus. (Bull.
Soc. ent. Fr., p. LXx-LXxI).

298. — — Nouv. observ. sur le groupe des Diplosis et description de
cinq genres nouveaux. (Ibid., p. cxCrI-CxCIY, fig).

299. — — Une nouvelle Cécidomyie du Saule. (Ibid., p. GLxxIv
CLXX VI).

300. — — Nouv. observ. sur les antennes des Cécidomyies. (Ibid.,
P. CCCXVIII-CCCEXIX, fig. 4-3.)

301. — — Tableau dichot. pour la distinction des larves du genre Di-
chelomyia Vivant sur le Saule. (Tbid., p. cex-cexn).

302. — — Diagnoses de deux Cécidomyies nouvelles. (Miscellanea
Entom. Narbonne, p. 150).

303. — — Observations sur les ornements des antennes des Cécido-
myies. (Feuille des Jeunes Naturalistes, Paris, 26° année, p. 7-
10 et 36, fig. 1-7).

30%. — 1896. Quatre nouveaux genres du groupe Diplosis (Ibid., p. 4-
à).

305. — — Division du genre Oligotrophus. (Ibid., p. à).

(25)

Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 203

306. Kigrrer (J.-J). — Neue Mittheilungen über Gallmücken. (Wiener

/

ent, Zeitg., p. 85-105).

307. — — Neucr Bcitrag zur Kenntniss der Epidosis Gruppe. (Ber-
liner Ent. Zeitschr., p. 1-44, pl. II).

308. — — Ueber die Unterscheidungsmerkmale der Gallmüceken. (Ent.
Nachr. Berlin, p. 67-77).

309, — — Diagnoses de quelques Diptères du groupe Diplosis re-
cueillis en Lorraine. (Bull. Soc. ent. Fr., p. 14-15).

310, — — Remarques et observ. sur les filets arqués des antennes
chez les Cécidomyides. (fbid., p. 37, fig. 1-2).

AL. — — Sur les Cécidom. du Saule; description d’un genre nouveau
et d’une espèce nouvelle, ([bid., p. 188-189).

312. — — Diagnose de trois Cécidomyies nouvelles. (Ibid., p. 216-
218, fig.).

313. — — Diagnose de deux espèces nouvelles de Cécidomvies. (Ibid,
p. 236-237).

314. — — Sur les transformations de certains organes chez les larves
de Cécidomyies. (Tbid., p. 237-238, fig. ).

31. — — Diagnose d’une nouvelle Cécidomyie. (Ibid., p. 233).

316. — — Observations sur les Diplosis et diagnose de cinq espèces
nouvelles. (Ibid., p. 382-384).

317. — 1896-1899. Zoocécidies d'Europe. (Miscellanea Entomologica,
Narbonne, t. IV-VIT).

318. — 1897. Note sur Cecid. baccarum et Cecid. hypogaea. (Bull. Soc.
ent: Fr., p. 261).

319. — — Diagnoses de Cécidomyies nouvelles du genre Perrisia
Rond. (Ibid., p. 500-301).

320. — — Meine Antwort an den Privatdocenten Herrn D° Karsch
und an den Herrn Zeichenlehrer Rübsaamen, mit Beschreibung
nener Gallmücken, Trier., 21 p.

321. — — Nachtrag zu den Zoocecidien Lothringens. (Berliner ent.
Leitschr., p. 17-24).

322. — — Monographie des Cynipides d'Europe et d'Algérie : Céci-

.domyies dans les galles de Cynipides (Spéciès des Hyménoptè-
res d'André).

20%

323.

32%

390

391

392

333

394.

334

339

330.

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. — — Suite à la Synopse des Cécidomyies d'Europe et d’Al-

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. — 1798. History of Tipula tritici and Ichneumon lipulae, With
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. -— 4590. À continuation of the history of Tipula trilici. (Ibid.,
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347. — — Note sur la Cécidomyie de l'Avoine. (Bull. des séances de
la Soc. nat. d’Agric. de France, séance du 43 juin, p. 425-426).

348. — — Sur les métamorphoses de la Cecidomyia destructor ei sur
le puparium ou l'enveloppe de la larve avant la transformation
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349. LaGeRHeIM (G.). 1893. Ueber Dipterocecidien aul Carex-Arten

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206 J.-J. KIEFFER. (26)

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plosis de cônes de Pins).

994. LETzNER. 1885. Ceulorrhynchus assimilis und Cecidomyia bras-
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399. LEeuckART. 1865. Die ungeschlechtliche Fortpflanzung der Ceci-
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396. — — Ucber die Fortpflanzung der viviparen Cecidomyidenlar-
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399, — 1877. Notes pour servir à l'histoire des Insectes du genre

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300. — 1884. Tableau synoptique et catalogue raisonné des maladies
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301. LICHTENSTEIN et PLANCHON. 1870. Instructions pratiques adres-
sées aux viticulteurs, p. 46.

302. LIEBEL (R.). 1886. Die Zoocecidien und ihre Erzeuger in Lothrin-
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303. — 1889. Asphondylia Mayeri n.sp. Ein neuer Gallenerzeuger des
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(Ibid., p. 282-286).

365. — — Ueber Zoocecidien Lothringens. (Ibid., p. 297-307).
366. — 1892. Die Zoocecidien der Holzgewachse Lothringens. Disser-

ation zur Erlangung der Doctorwürde. München.

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Russlands. (Bull. Soc. natural. Moscou, p. 12 ; 126-138).

368. — 1881. Ueber Euryloma hordei, albinervis, Lasioptera cerealis
und ihre Feinde. (Ibid., p. 9-12).
309. — 1877. Die Hessenfliege, Cecil. destruclor, in Russland. (Ibid.,

p. 378-441).

370, — — Die Pteromalinen der Hessenfliege. (Ibid., n° 4),

(27) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 207
371. LINDEMANN. 1888. Cecidomyia hierochloae, eine neue Gallmücken-
Art. (Ent. Nachr. Berlin, p. 50-52).

9172. — — Ueber das Vorkommen der Hessenfliege an wildwachsen-
den Gräsern. (Ibid., p. 242-243).

373. LINNE. 1761. Fauna Suecica. Stockholm.

374. — 1788. Systema naturae. Leipzig.

379. LiNTNER (J.-A.). 1879. Clover seed fIv, a new insect pest. (American
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nual Report of the entomological Society of Ontario, p. 28-30).

376. — — On Cecidomyia leguminicola. (Canadian Entomologist, 14,
p. 121-124).
377. — — Report on some injurious Inseets of the year 1878. (New

York State agricultural Society, 38° Annual Report, p. 61-72).

378. — 1880. Report on some injurious Inseets of the year 1879.
(New York State agric. Soe., 39% Annual Report, p. 35-53).

379. — 1883. Platygaster larva destroying galls of Cecidomyia salicis-
batatus (Psyche, 4, p. 79).

380. — 1886. Thrips destroing eggs of Cecid. leguminicola. (2%, Re-
port on the injurious and other Insects of New York. Albany,
p. 34).

381. — 1887. Cecidomyia destructor Say, hessian fly. (Report of the
state entomologist to the regents of the University of the State
of New-York, for the vear 1885, 39% Annual Report, p. 103).

382. — 1888. Chalcid parasites of Cecidomyia betula Winn. (On the
injurious and other insects of the state of New York. (Albany,
4 th Report, p. 27).

383. — — (Cecidomyia balsamicola n. sp. and its gall. (Ibid., p. 60-63).

384. — — Lasioptera vitis O. $S. and its gall. (Ibid., p. 63-67.

389. — 1889. Clover seed midge, Cecidomyia leguminicola Lint. (Ibid.,
5 Report, p. 262).

386. — — Black knot of the plum tree and its guests : Diplosis sep-

temmaculata (Xbid., p. 280).

1. Nous ne citons pas ici les journaux dans lesquels Lintner a publié des
observations sur les Cécidomyies ; ce sont surtout: Country Gentleman;
Albany evening Journal, New England homestead , etc.

208 J.-J. KIEFFER. (28)

387. LINTNER (J.-A). 1889. Hessian de Cecidomyia destructor Say.
(Ibid., p. 263).

388. — 1891. Pear midge, Diplosis pirivora Ril. in New-York. (Cana-
dian Entomologist, 23, p. 224).

389. - Cecidomyia balsamicola. (On the injurious and other insects
of the state of New York. Albany, 7! Report, p. 307).

390. — Cecidomyia Sp. in jumping gall. (Hbid., p. 308).

391. — 1892. Diplosis pirivora. (Ibid., 8!" Report, p. 140-152).

392. — 1895. Idem. (Ibid., 10" Report. p. 386).

393. — 1896. Cecidomyia belulae (Hbid., 11" Report, p. 162-165).

39% — Diplosis cucumeris, melon vine midge. (Ibid., p. 165-168.

999. — — Diplosis setigera. (Ibid., p. 168-170).

396. -— 1897. Cecidomyia leguminicola. (Hbid., 12* Report, p. 359).

397. Lio. 1863-1864. I Ditteri distribuli secondo un nuovo metodo

401.

402.

103.

40%

105.

106.

407.

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. LiPOVNICZKY (G.). 1884. Sur les dégâts de la Cecid. destructor dans

le départ. de Tolna. (Rovart. Lapok, t. I, p. 231-232).

. LOEW (H.). 1844. Beschreibung zweier merkwürdigen neuen Dip-

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. — 1845. Beschreibung einiger vom Herrn Pastor Hoffmeister zu

Nordhausen aufgefundenen merkw ürdigen Dipteren. (Hbid.,t. VI.
p. 394-402).

— 1847. Mittheilungen über die Verwandlungsgeschichte einiger
Insecten und über ihren Haushalt auf Pflanzen. (Allg. deutsch.
naturhist. Zeitg., t. If, p. 287-301).

— 1850. Dipterologische Beitrage, Theil IV, Posen, 40 p.avec pl.).
-—— — Ueber den Berstein und die Bersteinfauna, Berlin.

— 1851. Zur Kenntniss der Gallmücken. (Linnaea Entom., t. V.
p. 370-384).

- 1858. Ueber die den Roggen in den Provinzen Schlesien und
Posen verwüstende Fliegenmade. (Zeitsehr. f. Entomol. d. Ver.
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— 1859, Die neue Kornmade. Züllichau.

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Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 209

welche in den letzten Jahren beobachtet worden sind. (Berliner
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512. — 1896. Ueber eine Asphondylia-Galle. (Ibid., t. XV, p. 209-212,

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(Ibid., for 1889, t. IV, p. 1100).

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722. — 1892. Alpine Mückengallen. (Ibid., p. 356-376, pl. VI-VIF.

723. — — Beobachtungen über Mückengallen, (Programm des Gym-
nasiums zu Ohrdruf).

724. — 1893. Zwei hochalpine Rhopalomyia-Arten. (Verh. zool. bot.
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729. — — Die Mückengallen der Birkenfrüchte. (Forstlich-naturw.

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228

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J.-J. *KIEFFER. (48)

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727. — — Besprechung Rübsaamen’s Mittheïlungen über neue und
bekannte Gallmücken. (Bot. Centralblatt. Cassel., p. 262-264).

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bot, Verh. Neue Folge. Sitzher., p. 14).

729, — 1895. Die Fenstergalle des Berg-Ahorns. (Forstlich-Naturw.

Zeitschr., p. 429-437).

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731. — 1873-1874. — — (Ibid., t. II, p. 30-2, 78-80, 172-3, 252-4,
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732. — 1877-1878. — — (Ibid.,t. IV, p. 145, 168-170).

733. — 1879-1880. — — (Ibid., t. V, p. 213-217).

734. — AISS1-1882. — — (Ibid., t. VI, p. 15-20, 255-257).

735. — 1883-1884. — — (Ibid., New Series, t. I, p. 206-216, 276-
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736. — 1886. — — (Ibid., t. II, p. 250, 302).

737. — 1887. — — (Ibid., t. IT, p. 107-110).

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749 bis. — — Ricerche intorno agli Entomocecidi della Flora italiana.

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753. TUBEUF (C. von). 1893. Die Mückengallen der Birkenfrüchte.
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\

1
Si
Le)

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757. — — Note on certain Cecidomyidous Galls on Cornus (Ibid.).

(1) M. le D° Fr. Thomas, croit, et avec raison selon moi, que ces excrois-

sances ne sont pas l'œuvre de la Cécidomyie, mais que celle-ci s'y est dévelop-
pée quand ces excroissances commencaient à entrer en décomposition.

L
230 J.-J. KIEFFER. (50)

758. Tyzer TowxsexD (C. H.). 1893. Fleshy Cecidomyid Galls on Atri-
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l’insecte qui la produit. (Ann. Sc. nat. Paris, & XX VI, p. 263-
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767. — 1836. Observations sur deux espèces de fausses galles. (Ibid.,
sér. 2, t. V, p. 319):
768. — — Observations diverses : Sur quelques fausses galles,

p. 189; Galles chevelues du Gramen, p. 190; Insectes vivant sur
le Rhododendron, p. 221. (Mém. Acad. Sc. Dijon, p. 189-224).

769. — 1838. Observations entomologiques, Cécidomyie de lÉpine
blanche. (Ibid., p. 50).

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(51) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 231
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778. — 1882. Beitr. z. Kenntniss d. gallenerzeugenden Insecten Euro-
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783. — — Lasioptera populnea Wachtl. (Ibid., p. 308-310, pl. V).
78% — 1887. Zwei Gallmücken und ihre Gallen. (Ibid, p. 289-292,
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|
J.-J. KIEFFER. (22)

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817. — 1854. Ueber Cecid. juniperina L. und Cecid. pisin. sp. (Stetti-

\

ner ent. Zeitg., t. XV, p. 322-327).

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XX, p. 3-8, pl. D.

819 — — Die Gruppe der Lestreminae. ([bid., p. 9-56, pl. ID.

820. Vax DER Wuzr. 1874. Dipterologische Aanteekeningen, n° 4,
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821. — 1883. Anhangsel tot zipi werk over de Nederlandsche Diptera.
bide XX VEND ExxxNT) :
822. — und J.-C. pe Meuere. 1898. Nieuwe Naamlijst van Neder-

landsche Diptera. (Ibid., t. XLI, 150 p.).

823. ZETTERSTEDT. 1840. Insecta Lapponica. Lipsiae.

824. — 1850. Diptera Scandinaviae. Lund, t. IX, 1850, p. 3669-3701).

825. — 1852. Idem, t. XI.

826. — 1855. Idem, Addenda tomis IX et XI p. 4873-4886.

827. — 1860. Idem, t. XIV.

828. ZieGeLe. 1880. Ueber die Flora des Hohenasperg. (Jahresheît Ver.
Vaterl. Naturkunde. Stuttgart, 36 Jahrg., p. 57-64).

L.

234 J.-J. KIEFFER. (34)
$ 2.
CARACTÈRES GÉNÉRAUX
DES
CÉCIDOMYIES.

Considérons l’insecte dans ses divers états, à savoir, à l’état d’imago
ou d'insecte parlait, à celui de nymphe, de larve et d'œui.

I. — Caractères généraux de l'insecte parfait.

Il sera surtout question ici des caractères morphologiques externes ;
nous ajouterons quelques mots sur les caractères anatomiques, phy-
siologiques et biologiques.

1° Morphologie de l’insecte parfait.

On peut assigner aux Cécidomyies les caractères distinctifs sui-
vants : Antennes composées de plus de six articles. Ailes ayant au maxi-
mum six nervures longitudinales et une seule nervure transversale.
Neroure costale se continuant sur le bord alaire inférieur, où elle est
néanmoins toujours plus étroite que Sur le bord supérieur. Tibias non
terminés par un éperon (!).

Leur corps est allongé et svelte; la pilosité plus ou moins dense,
plus souvent appliquée que dressée, offrant toutes les formes inter-
médiaires, depuis celle d’un poil jusqu’à celle d’une écaille large et
striée longitudinalement et transversalement (pl. 45, fig. 4-8).

Leur coloration est sujette à des variations et peut facilement occa-
sionner des méprises. A peine éclos, l’insecte offre des couleurs claires,
sénéralement rouges ou jaunes, avec des bandes sombres; toutefois
les bandes et les dessins de couleur sombre font souvent défaut au
moment de l’éclosion et apparaissent un peu plus tard et petit à petit.
Cette coloration gagne ensuite insensiblement en intensité, et quand
l’insecte prend son essor, c’est-à-dire une ou deux heures après lé-
closion — selon que la température est plus ou moins chaude — sa
parure à atteint son plus bel éclat. La coloration tend ensuite à s’as-
sombrir. Bien des espèces prennent mênie finalement une teinte d’un
brun sombre, sur laquelle on ne peut plus ou à peine distinguer encore

(1) Chorisloneura sarothamni Kieff. fait exception, comme nous l'expli-
querons plus loin en parlant des pattes des Cécidomyies.

(55) Cécydomyides d'Europe et d'Algérie. 235

les bandes primitives. Mes observations m'ont convaincu que cet àas-
sombrissement n'indique pas le déclin de la vie; j'ai constaté pour
plusieurs espèces à l’état de liberté, par exemple pour les femelles de
Xylodiplosis praecox Winn. et de Campylomyza pini Kieff. que la teinte
claire ne dure guère que le premier jour et que linsecte vit encore
plusieurs jours avec la teinte sombre.

A. Téle de l’Insecte parfait.

La tête est de grosseur médiocre. Vue par devant, elle offre un con-
tour arrondi, moins souvent subtriangulaire. Le vertex n’est jamais
enfoncé, mais toujours plus ou moins convexe. Au-dessus de la
bouche se voit ordinairement une protubérance couverte de longues
soies. Les parties de la tête qui demandent une observation spéciale
sont la bouche, les palpes, les antennes, les yeux et les ocelles.

I. Boucue. — Chez les Chironomides et plus encore chez les Bibio-
nides, le bas de la face est ordinairement prolongé en forme de groin
plus ou moins allongé. Il n’en est pas de même pour les Cécidomyies,
chez lesquelles le bas de la face est au contraire peu ou point proémi-
nent, Dans la plupart des cas, la bouche des Cécidomyies ressort peu
et continue la direction de la face, avec l'extrémité légèrement re-
courbée en avant; chez Clinorhyncha toutefois, elle fait saillie en
forme de trompe et se replie vers la poitrine en formant un angle
avec la face (pl. 16. fig. 3; dans le genre Colomyia (pl. 16, fig. 4),
elle a également l'aspect d’une trompe, mais elle est moins prolongée
et ne forme pas d'angle avec la face. Dans le genre Stefaniella, les
parties buccales sont, au contraire, très petites, non proéminentes et
paraissant atrophiées, de sorte que le bas de la face semble être ar-
rondi entre les palpes et dépourvu de parties buceales: ces dernières
ne se reconnaissent qu’avee un fort grossissement et d’une façon peu
distincte. Les pièces qui composent la bouche sont le labre, les deux
mâchoires, la ligule et la lèvre inférieure. Le labre, labrum, ou lèvre
supérieure est une pièce chitineuse, médiane, unique et formant la
partie supérieure de la bouche; il offre une conformation variable,
depuis celle d’une pièce semi-circulaire ou ovalaire (pl. 46, fig, 4, {s),
jusqu'à celle d’une lamelle étroite, pointue et hyaline vers son bout
(pl. 16, fig. 3, /s); ses bords sont toujours munis de minimes soies.
Sa base s'articule à une pièce chitineuse et triangulaire (pl. 16, fig. 2, { ).
Les deux mâchoires, maærillae (pl. 16, fig. 2, m) se présentent sous
forme de deux pièces allongées, convexes en dehors, concaves en de-
dans et se touchant par leurs bords qui sont eiliés ou plus longuement

L
236 J.-1. KIEFFER. (56)

poilus que leur surface. Entre elles, et recouverte supérieurement par
le labre, se trouve la ligule ou languette (pl. 16, fig. 2, !) dont l’as-
pect est celui d'une pièce étroitement linéaire, fortement ciliée sur les
côtés dans sa moilié terminale. Dans le genre Stefaniella il m'a été
impossible de découvrir les mâchoires et la ligule.

Enfin en dessous, la lèvre inférieure paraît tantôt ne former
qu'une pièce unique, plus grande que le labre et les mâchoires, tron-
quée à son extrémité, par exemple chez Stefaniella, tantôt elle est
très courte, divisée en deux parties par un sillon longitudinal (pl. 46,
lig. 4, li) et S’articulant à une pièce triangulaire et chitineuse, semblable
à celle qui se voit à la base du labre. La conformation de la bouche in-
dique done que les Cécidomyies ne peuvent absorber qu’une nourriture
liquide et qu'elles ne peuvent entamer un tissu, comme le font certains
Chironomides dont la bouche est assez semblable à celle de Clino-
rhyncha, mais comprend, en plus, deux pièces linéaires, dentelées en
dedans vers leur bout et faisant office de mächoires supérieures.

I. PaLpes. — La lèvre inférieure présente à sa base, de chaque côté,
un prolongement conique où cylindrique, qui sert de support à un
palpe et a souvent lapparence d’un premier article de ce dernier
(pl. 46, fig. 4, p). Ces palpes ne font jamais défaut, à l'exception
du genre Oligarces, mais ils sont parfois très petits et difficiles à aper-
cevoir quand on ne se sert que d'une loupe. Le nombre de leurs ar-
licles varie de À à 4 (1) et forme un caractère générique. Dans la
plupart des cas, ils sont couverts d’une pubescence fine, disposée
sans ordre et entremêlée de quelques poils épars et plus longs; d’au-
tres fois la pilosité courte et serrée est disposée par rangées transver-
sales, de sorte que les articles paraissent être annelés ; cela à lieu pour
le groupe des Epidosides et la sous-famille des Lestreminae, et ce
caractère leur est commun avec les Sciaridae,les Mycetophylidae et
les Chironomidae. Parois aussi les palpes sont recouverts d’écailles.
ce qui est le cas pour les genres Lasioptera, Baldratia, Stefaniellu,
Clinorhyncha et Brachyneura.

IT, ANTENNES. — Chezles Cécidomyies, les antennes sont très fragiles.
inais aussi très gracieuses, surtout chez les mâles. L'insecte les porte
ordinairement relevées et arquées en arrière. Le point d'insertion est

(t) C'est par erreur que H. Loew [402] et Winnertz [814] indiquent dans leur
Monographie que les palpes sont toujours composés de quatre articles; l'un
et l'autre décrivent de nombreuses espèces dont les palpes ne comptent en
réalité que deux ou trois articles.

(57) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 237

toujours éloigné des parties buceales et se trouve vers le milieu ou le
liers supérieur de la tête. Ces organes demandent une attention parti-
culière, non seulement à cause de l'élégance de leur forme, mais
encore à cause de la diversité de leur conformation, qui offre des
caractères distinctifs importants.

Nombre, forme et couleur des articles. — Nous distinguons deux
articles basaux et un funieule composé de quatre à trente-six articles.
Ce nombre est tantôt un caractère propre à tout un groupe, par
exemple chez les Diplosides, où il est toujours de douze; tantôt un
caractère générique, par exemple chez les Asphondylia et les Schizo-
mya; tantôt il diffère avec les espèces d’un même genre ou enfin il
varie chez les individus d’une même espèce. Le premier article basal
a la forme d’un cône renversé, tandis que le second est globuleux. Le
premier article du funicule est plus ou moins distinetement pédiculé,
ce qui n’est jamais le cas pour les suivants; c’est par ce pédicule qu'il
s’'emboite dans une excavation obconique du second article basal,
laissant ainsi au funicule la faculté de se mouvoir en tous sens. A son
extrémité supérieure, il est tantôt soudé au second, ce qui est ordinai-
rement le cas pour les Diplosides (pl. 18, fig. 5), tantôt articulé avec
lui (pl. 48, fig. 12), ce qui est de règle pour les Lestrémines:; les suivants
sont toujours articulés l’un à l’autre et se brisent facilement à l'endroit
de cette articulation. Ils se terminent ordinairement par un prolonge-
ment cylindrique, souvent un peu évasé au bout et plus où moins
allongé, de sorte qu'ils ont apparence d’une minime bouteille ou ca-
rafe. L'article terminal est dépourvu de prolongement ou son prolon-
sement est autrement conformé. On a considéré longtemps ce prolon-
sement, que nous désignons du nom de col, comme un pédicule situé
à la base de l'article, et l’on disait, pour ce motif, que les articles des
antennes sont pédicellés. Laboulbène démontra en 1857 [343] que
cette interprétation était erronée et fit voir que ce pédicule n’était
en réalité qu'un prolongement terminal de l’article précédent. « Jai
bien vu, éerit-il, la manière dont les articles sont unis entre eux.
L'extrémité de chaque article est grêle, en forme de pédicule, la base
est globuleuse, munie de poils verticillés, fig. 44. »

J’ai constaté qu'il en est de même pour les autres familles des Né-
matocères ; ce que l’on considérait jusqu'ici comme pédicule, est au
contraire un prolongement terminal, comme chez les Cécidomyies.

La forme des articles est très variée; elle est tantôt cylindrique, tan-
tôt ellipsoïdale, ovalaire ou sphérique. Une conformation extrèmement
curieuse est celle que nous offre le groupe des Diplosides. Les anciens
auteurs admettaient tous que, chezles Diplosides, les articles du funicule

238 J.-J. NJEFFER. (38)

du mâle formaient un nombre double de celui des articles de la femelle.
Ce fut encore Laboulbène qui releva l'erreur et fit voir que le nombre
des articles était le même dans les deux sexes [344]. Dans sa description
de la Cécidomyie du Buis, cet auteur s'exprime de la facon suivante :
« L'appréciation du nombre des articles antennaires doit nous arrêter
et être discutée avec soin. J'ai dit qu'il y avait en tout quatorze articles,
tant aux antennes du mâle qu’à celles de la femelle ; je me trouve ainsi
en contradiction avec Meigen, Loew, Winnertz, Schiner, Wagner, etc.
c'est-à-dire avec ceux qui se sont le plus occupés des Cécidomyies.

« J'ai été longtemps à me rendre compte de la vérité à cet égard. En
faisant macérer l'antenne d’un insecte frais, puis en la traitant par une
solution de potasse, j’ai vu de la manière la plus évidente que tous les
articles de l'antenne mâle, moins les deux premiers, étaient formés de
longs articles à double renflement, ayant trois verticilles de poils : un
en haut, un en bas, longs et égaux, et un verticille moyen plus petit.
En réalité, l'antenne du mâle est faite sur le plan de l'antenne de la
femelle, ayant en plus un verticille de poils et un étranglement vers la
base; on s’en convainera en comparant les figures 41 et 13. Je recom-
mande aux observateurs de vérifier le mode d’articulation des articles
chez les Cécidomyies dont les mâles ont de longues antennes, Je ne
serais pas étonné que ce nombre d'articles fût le même chez les mâles
et chez les femelles, et que ce qui peut paraître une exceplion chez la
C. buxi devint la règle pour l'avenir. » Un autre moyen pour bien ob-
server cette disposition, est de rouler entre deux lamelles de verre une
antenne macérée dans de l’eau ou de Palcool; les articles se sépareront
et l’on verra trèsnettement que chacun se compose de deux renflements.

On remarque même, sur les articles des mâles de ce groupe, une
tendance à se diviser encore davantage, de facon à simuler non plus
deux, mais trois articles. Dans beaucoup de genres, le renflement su-
périeur est plus ou moins rétréei au milieu, et dans certaines espèces
de Bremia, ce rétrécissement est tellement étroit au dernier ou aux
deux derniers articles que l'on peut en réalité considérer l'article
comme composé de trois renflements. Cela est probablement le cas
pour les articles du funicule des mâles d'Hormomyia, dont le nombre
serait de trente-six; les espèces qui me sont connues ont les articles
des antennes conformés comme les mâles des Diplosides, c’est-à-dire
composés de deux renflements.

Trois insectes font pourtant exception à cette règle : ce sont Clino-
diplosis Liebeli Kieff. Clinodiplosis aberrans Kie®. et Massalongia rubra
Kieff., chez lesquels les articles antennaires du mäle ne se composent
que d’un seul renflement allongé comme chez la femelle.

(59) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 239

Quant à la couleur des antennes, on peut admettre comme règle gé-
nérale qu'elle est plus claire sur les deux articles basaux que sur le
funicule: celui-ci est ordinairement d’un brun plus ou moins sombre.
Dans tous ces cas, les articles du funicule offrent une coloration uni-
forme. Mais ici encore nous trouvons deux exceptions. L'insecte décrit
par Handlirsch sous le nom de Cecidomyia Braueri a les articles du
funicule d’un brun noir, tandis que leur prolongement ou col est d’un
blanc pur. Cela est du moins le cas pour le mâle; la femelle m’est in-
connue et Handlirsch ne fait pas mention de ce caractère si frappant.
La seconde exception est fournie par diverses espèces du genre Les-
todiplosis (alternans Kielf., cruenta Kieff., lineata Kieff. et septemgut-
tata Kieff.). Chez les mâles de ces espèces la nodosité inférieure de
chaque article du funicule est noire, tandis que la nodosité supérieure
est d’un jaune plus ou moins clair, ce qui est aussi le cas pour le coi
(sauf le bout) et le rétrécissement. Chez les femelles, les articles sont
nettement rétrécis en leur milieu, noirs dans leur moitié inférieure et
jaunes dans leur moitié supérieure; le col est jaune, sauf le dernier
quart qui est noir.

Ornements des antennes. — En me servant de cette expression, je ne
veux nullement prétendre, comme M. Rübsaamen m'en à accusé (!},
que le but des gracieux verticilles dont les antennes des Cécidomyies
sont munies, soit de servir d'ornement; j'entends par là qu’en réalité
ils ornent ces insectes, quelle que puisse être d’ailleurs leur destina-
tion. Mes observations me permettent de croire qu'ils servent d’or-
ganes du toucher.

On peut distinguer les sept sortes de verticilles qui suivent.

A. Verticilles de soies (Verticilli setosi). Outre la pubescence (?) qui
recouvre toujours la surface des articles antennaires et ne fait défaut
que sur leur col, qui est presque toujours parfaitement glabre, on
distingue des soies plus allongées, formant un ou plusieurs verticilles,

(1) Citons cette accusation à titre de curiosité : « Je voudrais tout d’abord,
pour faire comprendre à M. K. combien est comique le terme qu'il emploie,
lui demander s’il considère une verrue nasale ou le nez lui-même comme un
ornement du visage? Peut-être comprendra-t-il alors le ridicule et la faus-
seté du terme dont il se sert. » Voilà ce que M. le docteur Karsch, professeur
à l'Université de Berlin, oubliant sans doute qu'il a écrit lui-même que les
antennes de Diplosis Gollmeri Karsch sont « ornées de verticilles », a accepté
de servir à ses lecteurs, sous le titre de Nouvelles entomologiques de Ber-
lin! [Cf. 320; p. 10.]

(2) Dans le genre Brachyneura elle est remplacée par des écailles.

240 J.-J. KIEFFER. ‘60)

se détachant assez facilement de la papille qui leur sert de base et ne
manquant que dans les deux genres Asphondylia et Brachyneura. Ces
verticilles sont tantôt dressés et parallèles au grand axe de l'article, ce
qui est la règle pour le verticille supérieur chez les Épidosides, tantôt
étalés à angle droit, par exemple le verticille intermédaire dans le
même groupe, tantôt obliques, ce qui se voit le plus fréquemment, ou
enfin rejetés en arrière et incurvés à l'extrémité, par exemple le ver-
licille inférieur dans le groupe Campylomyza. En règle générale, ils
sont plus longs chez le mâle que chez la femelle. C’est la même chose
que nous observons chez les Chironomides, tandis que chez les Mycé-
tophilides et les Sciarides, sauf quelques exceptions, ces verticilles
font défaut. Leur forme est ordinairement régulière; dans le genre
Bremia et faiblement aussi chez quelques espèces de Lestodiplosis, leur
forme est irrégulière, c’est-à-dire que les soies sont beaucoup plus
longues sur un côté des articles que sur Pautre (pl. 46, fig. 7).

2. Verticilles de lamelles (Verticilli laminosi). Cette forme n'a été
observée jusqu'ici que sur des espèces de la sous-famille des Lestré-
mines. Chez Campylomyza villosa Kielf.. les articles du funicule offrent
vers leur tiers supérieur un verticille hyalin, formé d’une seule pièce
en lamelle, d'aspect subeylindrique, un peu évasé au sommet (pl. 47,
fig. 3). Campylomyza Strobli n. sp. présente des verticilles semblables,
mais à bord divisé faiblement en quatre lobes, formant ainsi une tran-
sition avec les suivants. Que l’on s’imagine une lamelle courbée en
cylindre, se déchirant en quatre lobes, et l’on aura la seconde forme,
c’est-à-dire celle de Campylomyza coronata Kieff. Iei aussi on se trouve
en présence d’un verlicille transparent composé d’une seule pièce,
mais cette pièce n’est plus entière comme dans l'espèce précédente,
quatre profondes incisions la divisent en autant de lamelles; ces der-
nières sont donc réunies l’une à l’autre par le bord de leur base et
forment ainsi une sorte de couronne autour de Particle. Enfin, chez la
femelle de Monardia stirpium Kieff., nous trouvons encore un verticille
de quatre lamelles hyalines (pl. 17, fig. 9), mais ces lamelles sont en-
tièrement séparées l’une de l'autre, un peu plus larges que hautes,
faiblement concaves en dehors, à peine échancrées supérieurement et
fixées à un support dans leur quart inférieur. Le mâle de la même
espèce n'a que deux lamelles autrement conformées, les deux autres
lamelles du verticille sont remplacées chacune par une paire de soies
(pl. 17, fig. 4).

3. Verticilles de filets arques {Verticilli arcuati). Les mâles du groupe
des Diplosides (je ne connais que trois exceptions sur plus de cent es-

(64) Cecidomyides d'Europe et d’Algerie. 241

pèces que j'ai examinées), ainsi que plusieurs femelles du même
groupe et quelques espèces du groupe des Épidosides, sont ornés de
verlicilles très gracieux. observés d’abord par Targioni Tozetti [704,
p. 464]. Dans la description d’Arthrocnodax pseudogallarum Targ.. cet
auteur écrit : © Articoli ornati (!) alternativamente di un verticillo
basale o di peli setilormi e di altro subapicale di peli lunghi, bilor-
cali all origine, e per l’apice di ciascun ramo, riuniti ad ansa coll
apice del ramo corrispondente del piu prossimo pelo congenere, da
un lato à dall altro ». Sept années plus tard, alors que je n'avais
encore aucune connaissance de l'observation du professeur de Turin,
qui semble être demeurée inconnue jusqu'à ce jour, ces « poils longs,
bilurqués à leur origine et réunis par leur bout à l'extrémité de poil
voisin, en formant une anse » furent décrits dans une de mes notices
de la facon suivante : « Au premier aspect, ces verticilles semblent
ètre composés de poils soudés deux à deux par leur extrémité,
mais en réalité, il n’en est pas ainsi. Tandis que les papilles des ver-
üicilles ordinaires ne portent qu’une soie, l’on voit iei deux minces
filets qui sortent de la même base, se divariquent, puis, au milieu
de leur longueur, chacun d'eux se recourbe subitement et va rejoin-
dre la papille voisine, à laquelle il est soudé par son extrémité; il
en résulte un verticille composé non pas de soies, comme d’ordi-
naire, mais de filets arqués ou bien, si l’on préfère, de poils filiformes
et recourbés, dont chacun serait fixé par son extrémité à la base du
poil suivant (fig.) » [298. p. cxon].
Cette observation fut diversement jugée. Selon Enzio Reuter, pro-
fesseur à l'Université d’Helsingfors [588], ces filets ne seraient autre
chose que le bord épaissi d’une lamelle hyaline, extrêmement fine, qui
m'aurait échappé; et un ancien maître d'école de Westphalie, M. Rüb-
saamen, ajoutait avec le bon ton qui le caractérise : « M. E. Reuter à
bien démontré que l'idée que M. K. s’est faite de ces organes est
fausse. Ces appendices sont en général peu apparents : chez Diplosis,
Dichelomyia et Lasioptera ils ne paraissent en règle générale que
comme des productions extrêmement petites, hyalines et ayant Ia
forme d’une verrue. Or M. K considérerait-il une verrue nasale ou le
nez lui-même comme un ornement du visage? » (?). Nous nous trouvons
donc en présence de trois opinions : celle des filets arqués formant
boucle, celle de lamelles à bord épaissi, e£ celle de M. Rübsaamen ou
« de productions extrêmement petites, ayant la forme de verrues ».

(1) Voir la note à la page 239 (59).
(2) Cf. Berliner entom. Zeitschrift, 1596, p. 402.
Ann. Soc. Ent. Fr., LxIX, 1900, 16

1
242 J.-J. KiEFFER. (62)

Pour cette dernière opinion, nous ne.lui ferons pas l'honneur de la ré-
futer; un regard jeté sur les figures 5, pl. 47, êt 7, pl. 16 suffira
pour la juger, elle et son auteur. Quant à la seconde, je puis affirmer
que les insectes sur lesquels M. Reuter a fait ses observations et qui
ont été ensuite soumis à mon examen, ont les verticilles en question
conformes comme les autres Diplosides que j'ai examinés. Or il est ab-
solument hors de doute que, chez toutes ces espèces, le verticille est
bien réellement formé de filets arqués et non point de lamelles: Je me
contente de transcrire ici les preuves que j'ai fournies en 1896. « Si
lon roule une antenne de Xylodiplosis entre deux lamelles sous le
microscope, les filets se détacheront et voici ce que l’on verra : 4° Au-
cune ligne transversale ne réunit les deux papilles; 2° les ares per-
dront leur forme irrégulière et se présenteront sous les aspects les plus
divers, depuis la forme allongée jusqu’à celle où l'arc se rapproche de
la ligne droite; or cela serait impossible si les filets n'étaient que le
bord épaissi d’une lamelle transparente ; 3° les filets eux-mêmes offri-
ront fréquemment la forme d’un 8 (ce qui a même parfois lieu sur
l'antenne même, comme je l'ai représenté dans mon dessin (Bull. Fr.,
1895, p. cxcIr), ou bien ils seront diversement contournés, presque
tressés, ce qui exclut évidemment la présence d’une lamelle entre eux.
Le dessin représente une portion d’un verticille détaché de l'antenne
et montrant ces diverses formes. J'avoue volontiers que, moi aussi,
j'ai considéré cette disposition comme « irréalisable », mais j'ai dû me
rendre à l'évidence. Tous les Diplosis observés jusqu'ici, y compris
celui dont parle M. Reuter, ont des filets arqués; les verticilles de la-
melles n'existent que dans le groupe Campylomyza ».

A ces preuves s'ajoutent encore les suivantes. M. Ch. Janet, ingé-
nieur à Beauvais, qui avait d’abord pensé « qu'une semblable dispo-
sition devait être considérée comme absolument irréalisable chez un
insecte », écrit après avoir examiné les antennes de Xylodiplosis : « J'ai
pu reconnaître que la description de « filets arqués » soudés par leurs
deux extrémités au tégument et formant une boucle ouverte, dépour-
vue de toute membrane de remplissage, est parfaitement exacte. Niles
imprégnations par le nitrate d'argent, ni les colorations par l’éosine
ne décèlent, à l’intérieur des filets arqués, une membrane que sa trans-
parence ferait échapper à l'observation directe. Bien plus, dans une
préparation, j'ai vu lun des poils d’un verticille non représenté par
M. Kiefer, qui, par suite d’un accident de préparation, passait nette-
ment au travers de la boucle formée par un filet arqué » [244,
p. 185].

D'autre part, vers la fin de la même année, Lininer, alors chef de la

(63) . Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 243

station entomologique de New-York, décrivant deux nouvelles espèces
de Diplosides, Bremia cucumeris (Lintn.)et Contarinia setigera (Lintn.),
donne également la description des filets arqués et ajoute, après avoir
parlé de l'opinion du professeur de Finlande : « In à preparation of
the male antennae of Diplosis pirivora Ril., a number of the arched fila-
ments became loosened and escaped from lheir attachments but the
anastomosis, where each arch is jointed to the base of the next, re-
mained unbroken and distinct. In this preparation the components of
the arches may be seen diverging at various angles — another evi-
dence in favor of there being no connecting membrane » [394, p.166].
C’est encore au même résultat qu'arrive, en 1897, M. Porter Felt, le suc-
cesseur de Lintner [1121.

S'il ne peut exister de doute au sujet de la présence de véritables
filets arqués, il n’en est plus de même quand on veut expliquer leur
formation. Je me contenterai d'exposer ici la théorie de l'ingénieur de
Beauvais (L. c.). Après avoir posé la question : « Comment peut-on
s’expliquer la formation de ces filets arqués ? », il répond : « Les poils
apparaissent, après le décollement de la cuticule chitineuse, sous forme
de bourgeons qui s'élèvent sur des cellules hypodermiques. Puis la
surface de ce bourgeon se chitinise et le poil prend ainsi sa forme dé-
finitive. Il n'est pas nécessaire, pour qu'il commence à se chitiniser,
que le bourgeon hypodermique ait atteint la longueur que le poil devra
alteindre. Dès que sa partie distale a acquis sa forme définitive, elle
peut commencer à former sa cuticule, tandis que la partie proximale
continue à croître pour se chitiniser, à son tour, dès que l'allongement
sera arrivé à son terme. Pour les filets arqués , il est probable qu'il se
forme sur les antennes de véritables lamelles hypodermiques (pl. 47,
fig. 12, a), que ces lamelles se bordent d’un bourrelet épaissi au-dessous
duquel apparait une fente et que la partie centrale se rétracte peu à
peu, de manière à ne laisser que les filets arqués qui se chitinisent
(pl. 47, fig. 49, b, ce, d). Il est probable que , contrairement à ce que
représente ce schéma, l'apparition de la fente au-dessous de lextré-
mité distale et la chitinisation de cette extrémité commencent bien
avant que la lamelle ait atteint la longueur totale correspondant à ia
hauteur des arceaux qu’elle laissera comme résidus définitifs. » Après
avoir rapporté cette explication, M. Porter Felt [AA2, p. #5], fait la re-
marque suivante : « This is perhaps as good a theory as can be advanced
and agrees closely with the facts, but it seems as though if true, there
should be remanants of the membrane observable in some of the spe-
cies. The insertion of the arched filaments being so similar to that of
selae renders this theory not easy to accept, though no better one can

L

24h J.-J. KiEFFER. . (64)

be advanced. IL is worthy of note in this connection that M. Kiefer has
described some small hyaline lamellae on the female antennae of the
genus Monardia. »

Si l’on considère des Cécidomyies appartenant à des genres ou à des
groupes différents, on sera frappé de la diversité de forme qu'offrent
les filets arqués. En prenant pour typique la forme dont il a été ques-
lion jusqu'ici, c’est-à-dire celle des mâles des Diplosides et d’un cer-
{ain nombre d'Épidosides, nous y trouverons néanmoins quelques va-
riations, soit quant à leur consistance qui peut être plus ou moins
chitineuse, parfois entièrement hyaline, soit quant à leur régularité.
Les verticilles réguliers, de beaucoup les plus fréquents, paraissent
tantôt par trois, tantôt par deux seulement sur un même article. Chez
les mâles des Diplosides, où chaque article se compose de deux ren-
flements et de deux rétrécissements, ou bien, si l’on préfère, de deux
nodosités et deux cols, le renflement inférieur porte toujours un verti-
cille de soies, et, un peu plus haut, un verticille de filets arqués; le
renflement supérieur n’a de même qu’un grand verticille de soies, au-
quel s'ajoute parfois un second plus court, mais tantôt un, tantôt deux
verticilles de filets arqués situés l’un au-dessus, l'autre au-dessous du
erand verticille de soies. Les nombreuses espèces de Contarinia, à
l'exception de C. picridis, ainsi que certains représentants du genre
Hormomyia, n’ont que deux verticilles de filets arqués, à savoir up sur
chaque renflement de l'article; chez les autres genres de Diplosides,
chaque article est pourvu de trois vercilles de filets arqués.

Quant aux verticilles &'réguliers, la plus curieuse forme se rencontre
dans le genre Bremia, dont elle constitue un caractère générique (pl. 46,
fig. 7). Nous remarquons ici aux verticilles supérieur et inférieur, une
boucle extrêmement longue, étalée, fort étroite et s’amincissant au
bout; les deux boucles voisines sont au contraire très petites, les sui-
vantes de plus en plus longues, mais dressées et n’atteignant ordinai-
rement pas le tiers de la boucle étalée. À chacune de ces boucles
correspond une soie à peu près d’égale longueur. Dans le genre Les-
todiplosis on remarque également ces verticilles irréguliers, mais cette
irrégularité est moins apparente et parfois à peine sensible.

4. Verticilles de filets appliqués {Verticilli appressi). Toutes les autres
Cécidomyines rentrent dans cette catégorie. Les boucles sont ici courtes
et appliquées à l'article qu’elles dépassent à peine, et les verticilles
sont reliés entre eux par un filet parallèle au grand axe de Particle.
Dans les genres Asphondylia, Polystepha et Schizomyia, les verticilles
sont parfois nombreux et toujours composés de filets sinueux (pl. 46,

(65) Cecidomyides d'Europe et d'Algérie. 245

fig. 6 et 9). Dans les autres genres, chaque article du funicule montre
seulement deux verticilles composés chacun de deux boucles très lar-
ges et en forme de demi-cerele, appliqués à leur support et reliés l’un
à l’autre par un filet droit, ou faiblement courbé (pl. 46, fig. 5 et 8).

5. Verticilles de créneaux (Verticilli crenulati). On trouve cette forme
dans la sous-famille des Lestrémines. Les mâles des genres Campylomyza,
Monardia et Bryomyia ont les articles du funicule excentriques et mu-
nis de plusieurs séries transversales de petits créneaux appliqués à l’ar-
ticle et portant à leur centre une longue soie. Les séries y sont ordi-
nairement disposées de la façon suivante. L’inférieure forme un verticille
ou anneau, un peu au-dessous du milieu de l’article; cet anneau est
oblique, étant plus rapproché de la base de l’article sur le dessus que
sur le dessous. La seconde série est également oblique, mais seulement
semi-circulaire, elle manque sur le dessous ainsi que les deux séries
suivantes qui sont encore plus courtes. La partie la plus convexe, c’est-
à-dire le dessus de l’article, offre donc quatre séries, tandis que le des-
sous n’en à qu'une (pl. 47, fig. 1-2).

6. Verticilles de faisceaux. Les femelles de Catocha présentent, au
tiers supérieur des articles, un verticille composé de quatre appendices
séparés l’un de l’autre et se divisant chacun en trois ou quatre prolon-
gements subulés, hyalins et un peu plus gros que les soies (pl. 47,
fig. 8).

7. Verticilles d'appendices filiformes. La femelle de Wasmanniella ap-
tera Kieff. a les articles munis d’un verticille composé de quatre ap-
pendices filiformes ou linéaires, rarement bifurqués, plus ou moins
courbés en dedans. Chez la femelle de Bryomyia (pl. A7, fig. 6-7), les
articles du funicule n’ont que deux appendices, à savoir, de chaque
côté un appendice hyalin, filiforme, courbé perpendiculairement au
grand axe de l'article et presque appliqué à ce dernier. Ces appendices se
retrouvent dans la famille des Chironomides, où les femelles du groupe
Chironomus portent aux articles du funicule deux appendices hyalins,
filiformes ou lancéolés, et dressés verticalement ou obliquement.

IV. YEUX ET OCELLES. — Les yeux occupent la plus grande partie de la
tête ; ils sont largement sinués au côté interne et se touchent généra-
lement au vertex, de sorte que le bord interne des deux yeux réunis
rappelle la forme d’un fer à cheval.

Parfois des espèces ont, dans l’un et l’autre sexe, les yeux nette-
ment séparés au vertex, par exemple Hormomyia cornifex Kiell., tan-
dis que d’autres espèces du même genre ont les yeux distinctement
réunis au vertex, par exemple Æormomyia crassipes H. Lw. et Lamber-

Li
246 J.-J. KigFrFEr. (66)

toni Kieff, Leur couleur est noire; une seule espèce, Camptomyia
erythromma Kieff., a les yeux d’un beau rouge. Les facettes dont ils se
composent paraissent hyalines quand on les voit de profil; elles se
touchent généralement et leur base offre alors une forme exactement
hexagonale, ce qui est très distinctement le cas pour les espèces du
genre Asphondylia; sur les bords des yeux et plus encore à leur ex-
trémité supérieure les facettes sont écartées les unes des autres, leur
base est arrondie et les intervalles paraissent toujours glabres. Quant
aux ocelles, ils n'existent que dans la sous-famille des Lestrémines et
sont groupés de telle façon que l'intermédiaire, situé plus en avant,
forme un triangle avec les deux latéraux.

B. Thorax de l'Insecte parfait.

Le thorax des Cécidomyies est convexe sur le dessus et porte un
stigmate de chaque côté du prothorax. Ce dernier est court et peu al-
longé (pl. 15, fig. 3); dans les genres Clinorhyncha H. Lw. et Asy-
napla H, LWw.,il se prolonge en avant, en s’amincissant insensiblement
en forme de col (pl. 15, fig. 2); dans le genre Hormomyia H. Lw., il
s’avance par-dessus la tête, en forme de capuchon (pl. 15, fig. 4).

Parres. — Chez les Cécidomyines et surtout dans le groupe des Épi-
dosines, les pattes sont longues et grêles ; chez la plupart des Lestrémi-
nes et des Hétéropézines, elles sont plus courtes et plus robustes ; leur
surface est tantôt entièrement couverte d'écailles, tantôt de poils
courts, serrés et appliqués, entremêlés d’autres plus longs, épars et
dressés. Le dessous des tarses est ordinairement parsemé de soies
dressées, dont la longueur égale environ l'épaisseur de Particle, Han-
ches non prolongées, au maximum deux ou trois fois aussi longues
que larges. Tibias presque toujours inermes, c’est-à-dire non termi-
nés par un éperon, mais portant seulement deux ou trois courtes soies
dressées, à son extrémité; je ne connais qu’une seule exception qui
est Choristoneura sarothamni Kieff., dont le tibia porte à son extrémité,
outre deux soies courtes, un éperon ou soie plus forte, qui atteint les
deux tiers de la longueur du métatarse, On serait tenté, pour ce motif,
ainsi que pour la forme insolite des antennes, d’exclure cette espèce
de la famille des Cécidomyies, si sa larve n'avait pas tous les caractères
de celles des Cécidomyies; notons encore que cet éperon est simple
et non dentelé comme chez les familles voisines.

Le nombre des articles des tarses est variable chezles Hétéropézines,
toujours de cinq chez les deux autres sous-familles. Il est rare qu'un
exemplaire capturé possède encore tous les articles des tarses: sou-

(67) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 247

vent même les individus obtenus par éclosion sont mutilés de la
même facon. On remarquera dans tous ces cas, que le premier ar-
ticle ou métatarse ne fait à peu près jamais défaut, mais que ce sont
les articles suivants qui manquent. Cela tient à leur mode d'insertion.
Le métatarse est fixé le plus solidement de tous, aussi est-il rare de le
voir se détacher du tibia auquel il s'articule de la même facon que
celui-ci au fémur. Le second s’emboîte dans le premier par un pro-
longement en forme de lame de couteau (pl. 18, fig. 4), qui diminue
insensiblement de largeur depuis sa base jusqu'à son sommet, ne Jui
laisse que peu de jeu et se brise ou se détache facilement; cet article
est donc en quelque sorte greffé au métatarse. Les segments suivants
sont articulés l’un à l’autre de telle facon qu'ils peuvent se mouvoir,
non plus seulement dans le sens vertical, comme le précédent, mais
en tous sens. La longueur de ces articles est variable et fournit des
caractères différentiels pour distinguer les sous-familles et les espèces
entre elles. Chez les Cécidomyines, le métatarse est beaucoup plus
court que le second article (pl. 15, fig. 1), chez les Lestrémines il
est plus long que le second (pl. 17, fig. 11). Les deux crochets du
dernier article sont tantôt simples (pl. 22, fig. 15), tantôt bifides
(pl. 22, fig. 43), tantôt dentelés (pl. 22, fig. 11), tantôt munis d’une
dent unique, tantôt brusquement élargis avant l'extrémité (pl. 22.
fig. 12). Ils sont ordinairement conformés de la même façon sur toutes
les pattes, rarement bifides sur les unes et simples sur les autres.
Tous deux sont fixés à l'extrémité d’un minime article cylindrique,
appelé ‘onychium (l), qui est mobile et se trouve souvent caché
en partie par la partie supérieure de l'extrémité du cinquième article
des tarses, qui s’avance ordinairement plus que la partie inférieure,
L'empodium, qui se trouve entre les deux crochets, se présente sous
la forme d’une pelote aplatie, de longueur variable, s’élargissant de
la base au sommet qui est tronqué ou arrondi; vu de profil, il parait
linéaire ou s’élargissant vers le bout libre. Le dessous est recouvert
de poils denses, dressés, sétiformes ou bien à extrémité recourbée
et élargie (pl. 22, 11-15). Le dessus est couvert de poils plus courts;
parfois le milieu du dessus est relevé sous forme de crête longitudi-
nale, mais j'ignore si cela est accidentel ou un caractère constant
(pl. 22, fig. 14). Dans la sous-famille des Lestrémines lempodium
est souvent mince, linéaire, glabre et muni inférieurement de trois à
cinq poils longs et ramifiés ou plutôt d’appendices hyalins, sétiformes

(1) Chez Miastor Mein., dont les tarses ne se composent que de quatre ar-
ticles, Schiner a pris l'onychium pour le cinquième article.

248 J.-J. Re FFER. (68)

else bifurquant une ou deux fois à leur extrémité, imitant le bois
du cerf, comme cela a lieu pour des espèces du genre Chironomus
(pl. 23, fig. 5); d'autres fois lempodium manque complètement
(pl. 23, fig. 6). Les deux pulvilles, situés de chaque côté des crochets,
ont la forme de la pelote, dont ïls n’atteignent à peu près jamais la
longueur (pl. 22, fig. 44); ils sont généralement peu apparents, sou-
vent rudimentaires où nuls. Je les ai signalés pour la première fois
en 1895 [290, p. 10]. C’est donc le contraire des Muscides, où les pul-
villes apparaissent toujours sous la forme de deux longues pelotes,
plus longues chez le mâle que chez la femelle, tandis que l'empodium
est représenté par une soie ou tout à fait nul.

AiLes. — Toutes les Cécidomyies, à l'exception de quelques Lestré-
mines, dont nous parlerons plus loin, sont munies d'ailes relativement
grandes et larges, à extrémité arrondie, rarement, chez quelques Hé-
téropézines, à extrémité amincie en pointe. Le bord supérieur et par-
lois quelques nervures sont munis de poils dressés ou d'écailles ap-
pliquées et se recouvrant ; le bord inférieur est toujours distinctement
cilié. A sa base, l'aile se rétrécit insensiblement au bord inférieur,
parfois subitement et presque à angle droit; mais on n’y trouve jamais,
comme chez les Muscides, après ce rétrécissement, l’appendice appelé
alule. La surface offre généralement des reflets irisés; elle parait
couverte d'une ponctuation très fine et très serrée, et parsemée de
poils relativement longs et appliqués, rarement d’écailles; chez la plu-
part des Hétéropézines et des Lestrémines, la pilosité alaire est au
contraire composée de soies extrêmement petites et dressées, comme
c’est la règle chez les Sciarines. Les écailles proprement dites sont
diversement conformées: elles sont habituellement allongées, rétré-
cies en pédicule à leur base et arrondies ou tronquées et dentelées
au sommet, Des stries nombreuses, droites et parallèles les parcou-
rent dans le sens de leur longueur et souvent aussi dans le sens
de leur largeur: les premières aboutissent chacune à une des dents
du sommet (pl. 15, fig. 7). Leur forme est la même que celle des
écailles qui recouvrent les nervures de divers Culicides, mais leurs
dimensions sont toujours plus petites. Celles des ailes, comme aussi
celles que l’on remarque sur les autres parties du corps, ont pres-
que toujours une couleur noire, mais on en voit aussi qui sont jau-
nes, d’autres qui sont d’un blanc pur et qui forment des taches ar-
gentées sur le bord antérieur de l'aile ou des bandes sur l'abdomen, etc.
L'examen de ces productions démontre que les écailles noires doivent
leur coloration à une couche de pigment; vues avec un fort grossis-

(69) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 249

sement, elles paraissent opaques; les écailles blanches, vues avec
le même grossissement, paraissent hyalines et ne renferment pas de
couche de pigment.

Dans le genre Endaphis et chez quelques autres Cécidomyies, la
surface alaire est parsemée de poils élargis en écaille, c'est-à-dire de
poils relativement longs, appliqués, rétrécis à leur base et à leur
sommet, comprimés et élargis en leur milieu. Leur forme est donc
intermédiaire entre celle des poils ordinaires de la surface alaire el
celle des écailles proprement dites (pl. 45, tig. 4-5).

Le bord antérieur de l'aile paraît épaissi de facon à former une ner-
oure costale; celle-ci est souvent interrompue après linsertion de la
troisième nervure longitudinale; mais, dans tous les cas, elle se pro-
longe, après l'insertion de la troisième nervure, avec ou sans inter-
ruption, jusqu’au bord postérieur où elle disparait insensiblement.
Dans un seul cas, c’est-à-dire chez le mâle de Diplosis auripes Fr.
Lôw, la partie basale de la nervure costale offre un renflement très
apparent el d’un beau blanc. Chez les Chironomides et les Bibionides,
la nervure costale cesse après sa jonction avec le cubitus.

Quant aux nervures longitudinales, leur nombre varie de deux à sept.
La dénomination employée par Schiner nous paraissant la plus exacte,
parce qu’elle s'adapte à tous les Diptères, nous l’adopterons ici et nous
distinguerons avec Schiner les nervures longitudinales suivantes. La
première, appelée nervure subcostale, ne fait jamais défaut; elle est
courte, simple dans les deux premières sous-familles, généralement
double chez ies Lestrémines. La seconde manque chez toutes les Céei-
domyies. La troisième, appelée nervure cubitale où cubitus, n'atteint
parfois que la moitié du bord antérieur et est alors tellement rapprochée
de la première qu’on ne peut l'en distinguer qu'après avoir fait dispa-
raitre les écailles qui la recouvrent (pl. 15, fig. 2 et 22, fig. 4), ou bien
elle est plus allongée et écartée de la première, et son extrémité est
tantôt éloignée de la pointe de l'aile (pl. 22, fig. 3 et 5), tantôt rappro-
chée d’elle, ou l’atteignant (pl. 22, fig. 6) ou enfin la dépassant même
(pl. 22, fig. 7 et 8). Le cubitus sort toujours de la première nervure:
son origine se trouve le plus souvent vers le milieu (pl. 22, fig. 3 et 7),
rarement vers l'extrémité de cette dernière (pl. 23, fig. 2); sa base offre
l'aspect d’une nervure transversale plus ou moins distincte, et a été
généralement considérée comme telle, ou bien cette base fait à peu près
défaut; dans l’un et l’autre cas le cubitus semble en réalité sortir de la
base de Ja cinquième nervure. Chez les Épidosides, le cubitus sort
ordinairement de la base de la première nervure, qu'il longe jusqu’au
delà de Ja moitié, pour s’en détacher subitement en formant un

»”
250 J.-J. KikFrer. (70)

angle avec elle; sa partie basale, qui se confond presque avec la pre-
miere nervure, n'a donc plus l'apparence d’une nervure transversale
pl. 22, fig. 8). La quatrième nervure longitudinale, que nous appelons
avec Schiner nervure discoidale, n'existe que dans la troisième sous-
famille et dans le genre Diallactes; elle est ordinairement simple
(pl. 22, fig. 8), rarement bifurquée (pl. 23, fig. 4-4): elle sort tou-
jours de la partie inférieure de la troisième. La cinquième, appelée
nervure postlicale, est presque toujours présente et généralement bifur-
quée; elle sort de la base de l'aile. La sixième et la septième, ou ner-
vures anules, ne se trouvent que chez quelques Lestrémines; elles
sortent de la base de laile et sont toujours simples (pl. 23, fig. 3-#).

Il n'existe qu'une seule nervure transversale, qui relie le cubilus à
la base de la nervure posticale. Dans la plupart des cas, elle semble
être la base du cubitus, comme nous venons de le voir, et elle est
considérée comme telle par tous les auteurs qui prennent Ja véritable
base du cubitus pour nervure transversale. Chez la plupart des Épi-
dosides, la nervure transversale s'écarte au contraire très nettement
de la direction du cubitus; à son origine, elle est éloignée de la base
de ce dernier et court tantôt parallèlement avec celle-ci, tantôt diver-
geant avec elle (pl, 22, fig. 8) et plus ou moins courbée en S.

Outre ces nervures, on distingue encore un pli alaire, caractéris-
tique pour les Cécidomyies et ayant l'apparence d’une nervure longi-
tudinale; ce pli est à peu près parallèle à la nervure posticale, dont le
‘ameau supérieur se confond ordinairement avec lui; c’est ce qui
explique comment certains auteurs ont considéré la base de ce rameau
comme une nervure transversale et le pli alaire comme une nervure
longitudinale. Chez les Épidosides on observe encore, entre l’extré-
mité du cubitus et celle de la nervure posticale, un pli alaire plus
court, partant du bord postérieur avec l'apparence d’une nervure lon-
gitudinale et n’atteignant pas le milieu de Paile. Bremi l’a signalé
d’abord, mais en le considérant comme une petite nervure. Nous in-
diquerons, en parlant de la classification, comment la nervation alaire
nous renseigne sur la place à assigner aux Cécidomyies dans le cadre
des Diptères, et sur la facon de grouper les représentants dont elle se
compose.

APTÉRISME ET DIMORPHISME. — Trois Lestrémines sont à rapporter ici.
J'ai décrit en 1898 [323, p. 49] une Cécidomyie aptère, chez laquelle
les deux ailes sont remplacées par un appendice opaque, charnu et
rouge comme le thorax ; à cause de l’endroit de leur insertion qui est
plus rapproché de l'écusson et des hanches postérieures que ce n’est

(74) Cecidomyides d'Europe et d’Algerie. 251

le cas pour les espèces à ailes normales, on pourrait aussi les consi-
dérer comme tenant lieu de balanciers, dont on ne trouve pas de ves-
tige. Le mâle de cette espèce m'est demeuré inconnu. Plus récemment,
en 4899 [480], M. le D: de Meijere a observé un cas de dimorphisme
chez les deux sexes d’une Cécidomyie nouvelle, qu'il a décrite sous
le nom de Monardia van-der-Wulpi. Parmi les mâles, certains indi-
vidus ont les ailes et les balanciers normalement développés, d'autres
ont ces organes très raccourcis et montrent quelque variation dans le
développement des ailes et des nervures. Ce qui est particulièrement
remarquable dans la nervation alaire de ces mâles, c’est que le cubi-
tus sort, non plus de la première nervure longitudinale, mais du bord
antérieur de l'aile (pl. 18, fig. 6), et que, dans les ailes les moins
développées, la dernière nervure longitudinale n’est pas bifurquée.
Quant aux femelles, les unes ont les ailes et les balanciers normale-
ment développés, les autres au contraire sont aptères, c’est-à-dire que
leurs ailes sont à l’état rudimentaire, sans nervure, mais seulement
avec une fine trachée provenant de la partie antérieure du thorax :
les balanciers sont extrêmement petits et offrent l’aspect d’une verrue
hémisphérique, munie quelquefois d'un poil à son extrémité. Ces
femelles aptères sont encore remarquables par leur écusson qui n’est
nullement proéminent, comme chez les mâles et chez les femelles à
ailes normales, et plus large que chez ces derniers. Un cas semblable
de dimorphisme a été signalé un peu plus tard par M. Rübsaamen pour
Monardia dimorphogyna Rbs. [642]. Tandis que l’aptérisme est connu
pour beaucoup de Diptères, le dimorphisme n’a été observé que fort
rarement. Je l'ai constaté pour les mâles d'Erioptera atra Meig.; Schi-
ner l'indique pour les deux sexes d’Elachiptera brevipennis Meig.
(I, p 231); le Rév. Père Strobl pour les femelles de Tipula varipennis
Wied. et fulvipennis Deg. (Die Dipteren von Steiermark. Wittheil.
naturiw. Vereins für Steiermark, 1894, p. 88 et 92); M. Stein pour les
mâles de Lipoptena cervi L. (Deutsche entom. Zeitschr., 1877, p. 297).

Chez un Cynipide, Biorrhiza pallida O1. (terminalis Fabr.) nous
remarquons un dimorphisme semblable chez ies femelles, et, comme
ici, la convexité de l’écusson diminue à mesure que les ailes se rac-
courcissent.

BALANGIERS. — L’écaille qui recouvre les balanciers chez un grand
nombre. de Diptères, fait défaut chez les Cécidomyies. Les balanciers
sont allongés, composés d’un pédicule et d’une massue; cette dernière
est tantôt plus longue, tantôt beaucoup plus courte que le pédicule,
couverte de poils ou d’écailles, tantôt ovoïdale, tantôt allongée, très

252 1.1. Ravrrer. (72)

rarement cComprimée et formant ainsi une transition entre le balancier
el l'aile. Chez Wasmanniella ils font complètement défaut.

C. Abdomen de l’Insecte parfait.

L'abdomen des Cécidomyies est allongé, ordinairement aminei vers
l'extrémité, revêtu de poils appliqués ou d’écailles, ou de longs poils
dressés. Il se compose de neuf segments, dont les huit premiers sont
munis d’une paire de stigmates. Chez le mâle, le neuvième segment
porte l’armure génitale, qui est habituellement plus ou moins recourbée
par en haut; chez la femelle, il porte l’oviducte. Dans les genres
Camptomyia el Rübsaamenia les derniers segments abdominaux sont
recourbés par en haut.

l. ARMURE GÉNITALE DU MALE. — La première description exacte de
l'appareil génital d’un mâle de Cécidomyie a été publiée en 1886 par
Riley, alors chef de la station entomologique de Washington [596,
p. 287] : « Il est probable, écrit cet auteur, que l'appareil génital du
male offre des caractères servant très avantageusement à distinguer
l'espèce décrite, et c’est pour ce motif que j'ai donné une figure
agrandie de ces parties. Il ÿ à tout lieu de croire que pour cette fa-
mille, qui contient des espèces si petites, d’une coloration si uni-
forme et parmi lesquelles il est si difficile d'établir des différences
spécifiques, on trouvera à l'avenir dans la forme de l'appareil génital
les caractères les plus importants pour la classification. Il est vrai-
ment étrange que les auteurs qui se sont occupés de Cécidomyies,
aient accordé si peu d'attention à cet organe ». L'auteur américain
me fit encore la même remarque plus tard par lettre, en m’envoyant
le travail que je viens de citer. Sa supposition ne tarda pas à être
prouvée : quatre ans plus tard, c’est-à-dire en 1890 [266, p. 29], je
signalai pour Rhopalomyia syngenesiae (H. Lw.) la forme insolite
de la pince, par laquelle cet insecte se distingue de la plupart des
Cécidomyines.

Si nous considérons cet organe, nous y remarquons la pince ou
lorceps, les lamelles et le stylet.

La pince est formée par deux branches horizontales, incurvées l'une
vers l’autre, se mouvant dans un même plan et composées chacune
de deux articles. L'article basal (pl. 19, fig. 2, a) est ordinairement
le plus gros, dans le genre Macrolabis il est même cinq ou six fois aussi
gros que l’article terminal; sa surface est couverte d’une pubescence
courte et assez dense; elle est, en outre, parsemée de poils longs et

(73) Cécilomyides d'Europe et d'Algérie. 253

\ /

obliquement dressés. Dans les genres Schizomyia, Lestodiplosis et
Dicerura il est muni d'un appendice sur le dessous ou sur le côté
interne comme c’est ordinairement le cas chez les Chironomides
(pl.=19, fig. 7). L'article terminal (pl. 19, fig. 2, f) est de forme
très variée suivant les genres ou, dans le groupe Campylomyza, sui-
vant les espèces. Il est articulé à l’article basal et peut se mouvoir en
dedans. indépendamment de ce dernier. Son extrémité est presque
toujours munie d’un appendice en forme de crochet où d’un groupe
de petites épines. Sa surface est parlois glabre, ordinairement recou-
verte d’une fine pubescence, moins souvent parsemée de longs poils
dressés.

Les lamelles sont au nombre de deux ou trois. Les deux premières
se trouvent au-dessus du stylet qu'elles recouvrent en tout ou en
partie; elles sont superposées l’une à l’autre et soudées ensemble par
leur base, comme je lai démontré en 1891 [272, p. 243], de sorte
qu'elles se meuvent dans le sens vertical, c’est-à-dire de bas en haut.
Nous avons appelé, en 1891, la première (pl. 19, fig. 2, a) lamelle

superieure (lamellula superior), et la seconde (pl. 19, fig. 3, b) la-
melle intermédiaire (lamellula intermedia). Dans la sous-famille des
Cécidomyines, la lamelle supérieure est presque toujours plus ou
moins profondément bilobée; ces lobes sont arrondis, moi ouvent
échancrés ou tronqués obliquement La lamelle intermédiaire est de
forme plus variable, tantôt bilobée, tantôt échancrée, tantôt entière,
ou encore étroite et linéaire, etc. Sa forme constitue souvent un carac-
ière générique; d’autres fois elle indique un caractère spécifique, par
exemple dans le genre Hormomyia dont quelques espèces, comme
IT. cornifex Kieff., H. Lambertoni Kieff., ont une lamelle intermédiaire
à extrémité arrondie, tandis que d’autres, par exemple H. Strobli
Kieff., offrent une échanerure à l'extrémité de cette lamelle. Riley [596,
p. 288] a bien décrit ces deux lamelles pour Contarinia pirivora
(Ril.). Il dit de la lamelle supérieure « qu’elle est lobée en croissant »:
et que « les deux cornes du croissant atteignent environ l’extrémité
du stylet (the tip of the style) ». La lamelle intermédiaire est décrite
ainsi : « Immédiatement au-dessus du stylet (Still above the style) se
voit une pièce divisée en deux lobes par une entaille médiane en
forme de V ». C’est bien à tort que M. Rubsaamen [625, p. 48] a fait
à Riley le reproche d’avoir mal observé, et a nié l'existence de cette
entaille, en prétendant qu'au lieu de deux lamelles bilobées, il fallait
admettre quatre lamelles entières, superposées deux à deux et fixées
par leur base à un renflement de l'appareil génital. La figure 3, pl. 49,
reproduction d’un dessin que j'ai publié en 1891 [272]. représente les

204 J.-J. Kierren. (74)
deux lamelles relevées par en haut et dissipe tout doute sur la justesse
de lobservation de Riley.

La lamelle inférieure (lamellula inferior) se trouve en dessous du
stylet et se compose de deux pièces parallèles (pl. 19, fig. 2 et 3, c).
Elle manque dans beaucoup de genres, par exemple chez les Diplo-
sides.

Le stylet (stylus) est décrit ainsi par Riley [596, p. 288] : « Just above
these claspers is the style (!) or intromittent organ proper, à pointed
process, reaching, when at rest, note quite to half the length of the
swollen basal joint of claspers ». Cet organe (pl. 19, fig. 2 et 3, ©)
est subeylindrique, souvent un peu aminci vers le bout, transparent
au moins dans sa moitié terminale, situé dans le même plan que la
pince et fixé entre les deux branches de cette dernière.

I. Ovinucre. — On peut distinguer trois formes principales, à savoir
l'oviduete à appendice en pochette, l’oviducte aciculaire et loviducte
à lamelles.

\

L’oviducte à pochette (pl. 20, fig. 4) est presque toujours rétrac-

(1) J'ai cité ici les paroles mêmes de Riley; je m’élais contenté autrefois
d'employer les termes de cet auteur, en désignant leur provenance; mais mal
m'en a pris! Que l'on en juge par la remarque suivante que M. Karsch, pro-
fesseur à l'Université de Berlin et rédacteur des Zntomologische Nachrichten,
a acceplé de publier comme une « nouvelle entomologique » : « Si M. K.
rougit d'employer le terme de pénis, il devrait rougir aussi de recourir au
mensonge. Que l'on ouvre le volume de l’année 1887 du Wiener Entom. Zei-
lung, on y trouvera que Riley s’est servi tout au contraire du terme que M. K.
ne veut pas employer... Les mensonges ont de courtes jambes ».M. Rübsaamen,
l’aimable auteur de cette remarque, le même qui se flattait que « ses gros-
sièretés (sic!) feraient cracher du fiel à un professeur de l'Université de Paris »,
a, dans le cas particulier, dupé le lecteur en le renvoyant non au texte original
que j'avais cilé, mais à une traduction allemande inexacte parue un an plus
tard que le texte original! Son procédé est d'autant plus inexcusable que j'a-
vais, dès 1891 [272, p. 243], indiqué le texte original dans les termes suivants :
« Riley à désigné cet organe du nom de stylet (s/yle), dans le Report of the
Entomologist for the year 1885, Washington, 1886, p. 288 ». Si l’on recourt au
texte original, il est facile de se convaincre que Riley a réellement, et à trois
reprises, désigné l'organe en question du nom de s{ylet. Notons encore que
le Professeur de l'Université de Berlin, honteux et confus — je lui avais re-
levé sur une seule des pages de sa Revue quinze assertions fausses — refusa
d'insérer une rectification, ne voulant sans doute pas apprendre à ses lecteurs
comment ses « Nouvelles entomologiques de Berlin » les avaient dupés (cf. Ber-
liner Ent. Zeitschr., 1896, p. 401-407).

(7) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 259
tüile et susceptible d'être très allongé; sa forme parait subeylindrique et
ses parois peuvent se dilater fortement, ce qui à lieu au moment de la
ponte, l'œuf étant plus large que l'oviducte. À son extrémité, on re-
marque un appendice en forme de pochette, de même largeur que
loviducte, muni comme lui de poils tactiles, fermé à son bout libre et
ouvert longitudinalement en dessous, dans son tiers inférieur; à
l'endroit de cette fente se trouve un minime appendice en forme de
lamelle velue. Cette forme n'existe que dans la sous-famille des Céci-
domyines, où toutes les espèces du premier groupe, à l'exception de
Choristoneura Rbs., et une partie de celles du second en sont pourvues.
Comme cette sorte d’oviducte n’est pas apte à forer, il est évident que
les espèces qui en sont munies ne peuvent pas entamer le tissu des
plantes en y déposant leurs œufs.

L'oviducte aciculaire (pl. 20, fig. 1-3) est susceptible de s’allonger
fortement comme le précédent, mais sa forme rappelle celle d’une
aiguille et il ne se termine ni par un appendice en pochette ni par des
lamelles distinctes. Son extrémité est munie d’une pointe qui offre en
dessous, à sa base, une ouverture par laquelle l'œuf devra sortir au
moment de la ponte. Cette forme n'existe également que dans la sous-
famille des Cécidomyines, c’est-à-dire chez un genre du premier
groupe (Choristoneura Rbs.), chez trois genres du second groupe
(Asphondylia H. Lw., Schizomyia Kieff. et Cystiphora Kieff.), puis chez
trois genres du troisième groupe {Monarthropalpus Rbs. et imparfaite-
ment chez Contarinia Kielf.et Stenodiplosis Reut.). Pour Choristoneura,
Asphondylia, Schizomyia et Monarthropalpus loviducte parait être apte
à perforer le tissu d’une plante; Contarinia et Stenodiplosis, chez les-
quels la pointe est plus ou moins distinctement bifide, élargie et munie
de poils tactiles, et d’un minime appendice en dessous, forment la
transition entre la seconde et la troisième forme.

L'oviducte à lamelles (pl. 21, fig. 4) est parfois susceptible de
s’allonger comme les formes précédentes et d'atteindre même une lon-
gueur égalant plusieurs fois celle du corps, mais le plus souvent il
n’est pas proéminent ni susceptible de s’allonger. Il se termine par une
ouverture arrondie au-dessus de laquelle se voient deux lamelles pa-
rallèles, munies de poils tactiles, tandis qu'au-dessous de cette ouver-
ture on ne remarque qu'une ou deux lamelles beaucoup plus petites.
Cette forme existe chez toutes les espèces des sous-familles des Hétéro-
pézines et des Lestrémines ; dans la sous-famille des Cécidomyines, on
la trouve dans le genre Mikiola qui forme la transition entre le 2 et le
3° groupe, puis dans tous les genres du troisième groupe, à l'exception

nn - d =
256 J.-J. KiEFFERr. (76)

de Monarthropalpus, Contarinia el Stenodiplosis, enfin chez tous ceux
du 4° groupe.

Ces lamelles peuvent présenter différentes formes. Tantôt elles ne se
composent que d'un article unique (2° et 3° groupes des Cécidomyines),
et alors elles sont plus ou moins soudées à leur base, formant ainsi
une transition vers l’oviducte des Contarinia et des Stenodiplosis, ou
bien elles sont entièrement libres, ce qui est ordinairement le cas:
tantôt elles sont biarticulées, ce qui a lieu pour le 4° groupe des Céci-
domyines, à l’exception de quelques genres qui forment la transition
entre ce groupe et le précédent: on trouve encore les lamelles biarti-
culées chez certaines Hétéropézines; enfin elles paraissent triarticulées
chez quelques genres du 4° groupe des Cécidomyines et chez tous ceux
des Lestrémines. L’oviducte à lamelles est évidemment inapte à enta-
mer une plante.

D. Cas danomalie.

Il n’est pas rare de trouver des cas d’anomalie chez l’insecte partait.
Nous avons déjà parlé du dimorphisme alaire qu'on pourrait faire ren-
trer ici. Le cas le plus fréquent se présente pour les palpes et les an-
tennes. Il arrive que plusieurs articles des palpes sont soudés entre
eux et n'en font qu'un. La même chose a lieu pour les antennes, sur-
tout pour les deux derniers articles, comme je l'ai observé bien des
fois. M. Marchal cite un cas d’anomalie pour Mayetiola destructor |[446,
p. 7]: « J'ai rencontré une antenne qui ne présentait que 2 -- 11 ar-
ticles; le second article mamelonné d’une façon irrégulière, résultait de
la réunion de trois articles, le quatrième et l’avant-dernier résultaient
chacun de la réunion de deux ». Pour Contarinia ononidis Kieff. j'ai
signalé un cas plus remarquable : « L'unique mâle que j'ai obtenu
offrait une anomalie assez curieuse : l’une de ses antennes était con-
formée comme d'ordinaire, c’est-à-dire chaque article du funicule com-
posé de deux renflements globuleux et de deux cols; l’autre avait les
quatre premiers et les cinq derniers articles du funicule semblables à
ceux de la première antenne; l'article cinquième paraissait encore com-
posé de deux renflements globuleux, mais à peine séparés par un rétré-
cissementet non plus par un long col ou pédicule; le sixième n’offrait
plus qu'un renflement unique, allongé, un peu moins gros au milieu
qu'aux deux bouts, et semblable aux articles du funicule de la femelle ;
le septième semblable au cinquième » [324, p. 105]. On à donc ici le cas
de l'antenne d’un mäle, dont un article a adopté la forme de ceux de la
femelle, et deux autres une forme intermédiaire. En réalité, chez trois
Diplosides, Clinodiplosis Liebeli Kieff., aberrans Kielf. et Massalongia

(77) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 257

rubra Kieff. le funicule du mâle est conformé comme chez la femelle.

Chez le mâle de Clinodiplosis caricis Kieff. j'ai observé une anomalie
encore plus étrange : l'antenne offre ici une tendance à se bifurquer
(pl. 48, fig. 7). L'article neuvième est normal, c’est-à-dire composé
d’un rentlement globuleux séparé par un col plus long que lui, d’un
renflement piriforme terminé lui-même par un col aussi long que lui;
l’article dixième a le renflement globuleux ainsi que le col qui le sépare
du renflement piriforme normaux, mais le renflement piriforme est
dépourvu de col et soudé par toute sa largeur au douzième article; le
onzième article sort latéralement de l'extrémité du dixième et de la base
du douzième, avec lesquels il forme presque un angle droit; il est dé-
pourvu de col et se compose d’un renflement basal globuleux et d’un
renflement terminal plus gros et subglobuleux.

20 Caractères anatomiques de l’imago.

Il ne sera question ici que de l'appareil respiratoire. Comme chez la
larve, le nombre de stigmates est de neuf paires, réparties de la façon
suivante : la première paire se voit latéralement un peu en avant de
l'insertion de l'aile; les huit autres sur les huit segments abdominaux,
dont le dernier semble être la base de l’oviducte. M. Marchal indique au
contraire deux paires de stigmates au thorax, à savoir une en arrière
du prothorax et l’autre au métathorax. De même que chez la larve, les
irachées forment deux troncs latéro-dorsaux, de forme sinueuse,
émettant au côté externe, à Chacun des sept premiers segments abdo-
minaux, une branche transversale, qui se rend à un stigmate; après
chaque branche externe, les troncs sont réunis entre eux par une.
branche interne moins grosse, également transversale et presque droite,
qui émet de chaque côté de son milieu un rameau dirigé en avant et
se perdant en un faisceau fibrilleux communiquant avec le vaisseau
dorsal.

3° Caractères physiologiques de l’imago.

A l’état d’insecte parfait, les Cécidomyies ne vivent que quelques
jours, parfois même quelques heures seulement, du moins en captivité.
Comme Laboulbène l’a déjà remarqué pour Monarthropalpus buæi Lab.
et Perrisia papaveris Winn., « l’accouplement a lieu à la manière des
chiens, le mâle et la femelle étant placés sur une même ligne » [344,
p. 323]. Les mâles meurent peu après l’accouplement, tandis que les
femelles s’éloignent et cherchent un endroit propice pour y effectuer

leur ponte. Au repos l’insecte appuie tous ses tarses sur le support;
Ann. Soc. Ent. Fr., LxXIX, 1900. 17

”»

298 J.-J. KIEFFER. (78)

\

chez Choristoneura sarothamni Kief., les pattes postérieures sont au
contraires relevées par en haut, recourbées et éloignées du support,
de sorte que l’insecte ne s'appuie que sur ses quatre pattes antérieures.

Voz ET MOUVEMENTS. — Le vol des Cécidomyies est leste à l’état de
liberté, C'est ainsi que les espèces lignicoles qui se trouvent en abon-
dance sur les quartiers de bois empilés dans les forêts, sont difficiles à
saisir, parce qu'elles s’envolent rapidement et au loin, dès qu'on les
approche. Il en est de même des espèces cécidogènes. Mème celles au
corps épais et lourd, comme Mikiola fagi Hart. et les ZZormomyia H.
Lw., volent fort haut, bien que plus lourdement. On trouve les galles
de la première jusqu’au sommet des grands Hêtres, et j’ai capturé des
représentants du second groupe sur des fenêtres du second élage au
collège de Bitche. Il en est autrement pour les individus obtenus par
éclosion ; leur vol est toujours plus lourd qu’à l’état de liberté.

Les Porricondyla, Dicrodiplosis longipes Kieff. et d’autres espèces aux
pattes d’une longueur démesurée se posent volontiers sur les toiles
d'Araignée tendues verticalement sur les quartiers de bois empilés et
s'y balancent en leur imprimant un mouvement de va-et-vient assez
rapide; quand on approche d’elles un tube à alcool pour les capturer,
elles s’envolent précipitamment, sans être aucunement retenues par la
toile. Quant au contraire elles se sont précipitées pendant leur vol,
dans une toile d’Araignée qu'elles n'avaient sans doute pas remarquée,
elles s'y empêtrent et demeurent ordinairement prises.

NOURRITURE. — Il est rare que l’on apercoive une Cécidomyie prenant
de la nourriture. Quelques Lasioptera et Clinorhyncha et quelques
Lestrémines butinent sur les fleurs d'Ombellifères, surtout d'Heracleum
sphondylium. Selon Rondani [612, p. 491], les femelles de Wcromyia
lucorum Rond. se prennent en mai dans les fleurs d’Aristoloche et pro-
curent indirectement la fécondation de cette plante. Selon Meigen [477,
p. 81], les femelles de Campylomyza aceris Meig. se trouvent en abon-
dance sur les feuilles de l'Acer platanoides. J'ai observé plusieurs fois
des Campylomyza posés sur des feuilles très légèrement humides et
y appuyant leur trompe à différentes reprises, comme pour en pomper
le suc. Apetz a fait l'observation suivante. Un Campylomyza était posé
sur une chenille de Smerinthus ocellata et paraissait s’y être solide-
ment fixé. Une seconde fois le même fait fut observé et lon remarqua
distinctement que le Diptère suçait la chenille, à la façon des Culex.
L'auteur en coneluait que les Campylomyza semblaient tenir le rôle
des Culeæ auprès des chenilles [42, p. 62]. Comme les parties buccales

(79) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 259

des Campylomyza ne leur permettent pas d'entamer un tissu, mais
seulement de lécher et de pomper un suc, on ne peut done accorder
à ces insectes le rôle des Culicides.

PoxTE. — Au moment où il se dispose à pondre, l’insecte court en tous
sens sur la partie de la plante à laquelle il veut confier ses œufs. A-t-il
trouvé un endroit propice, il courbe alors la partie postérieure de son
abdomen perpendiculairement à la surface du support, mais l’oviducte
est couché parallèlement à cette surface et animé d’un mouvement vi-
bratoire. D’autres fois, par exemple chez Xylodiplosis praecox Winn..
loviducte est perpendiculaire au plan du support dans lequel il pé-
nètre. On voit alors la base de l’oviducte se renfler considérablement ;
à ce moment, l’insecte semble se reposer un instant, puis, après un
nouvel effort, l'œuf entre dans l’oviducte qu'il traverse ordinairement
si rapidement que l'œil a peine à le suivre; pendant ce trajet, l'oviducte
s'étend considérablement dans le sens de sa hauteur, mais peu dans celui
de sa largeur, et le pli longitudinal que l’on voit de chaque côté avant
la ponte disparait; arrivé à l'extrémité de l’oviducte, l'œuf y subit un
nouvel arrêt, étant retenu en partie par la pochette ou les lamelles de
l'oviducte ou encore par un liquide visqueux qui le fait adhérer fai-
blement à l’oviducte, de sorte que l’insecte peut le fixer au substratum.
Souvent 2 à 7 œufs se succèdent de la sorte en se poussant l’un l’autre
et forment ensuite comme une chaîne composée d'autant d’anneaux.
D'autres fois les œufs sont pondus en amas plus ou moins considérable.
C’est ainsi que Winnertz a observé dans une seule galle : pour Perrisia
cardaminis Winn. 10 à 15 larves, pour P. acrophila Winn. 20 à 95.
et pour Dasyneura brassicae Winn. 50 à 60. Pour Contarinia pulchri-
pes Kieff. j'en ai observé 86 dans une seule gousse de Genêt, et pour
C. campanulae Kieff. 103 dans une seule fleur de Campanule. Nous
parlerons plus loin, en traitant de l’œuf, du nombre d'œufs que ren-
ferme le corps d’une femelle.

Quant à l'endroit où s’effectue la ponte, ce n’est pas toujours celui
où les larves trouveront leur nourriture; dans ce cas celles-ci seront
obligées d'effectuer une migration immédiatement après leur sortie de
l'œuf. Citons quelques exemples : Mayetiola destructor Say pond ses
œufs sur la face supérieure des feuilles du Blé, dans les sillons qui se
trouvent entre les nervures: la larve descend de la feuille immédiate-
ment après son éclosion, jusqu’à ce qu’elle se soit dérobée à la lumière
sous la gaine. Il en est de même de W. avenae March., de Dasyneura
scirpi Kieff., etc. Mikiola fagi Hart. pond sur un bourgeon de Hêtre ou
sur lécorce immédiatement en desscus d’un bourgeon: les jeunes

Cs

260 J.-J. KIEFFER. (80)

larves pénètrent entre les écailles jusque sur les petites feuilles sur
lesquelles elles se fixent. Contarinia campanulae Kiel. et Perrisia sari-
fragae Kiel. déposent leurs œufs sur les fleurs encore à l'état de bou-
ton, et les larves pénètrent plus tard dans celles-ci sans les perforer. II
semble que dans tous ces cas la larve fuit la lumière. D’autres espèces,
telles que Contarinia pulchripes Kieff., Xylodiplosis praecoxæ Winn., etc.
déposent leurs œufs à l’endroit même où la larve trouvera sa nour-
riture.

On peut voir au printemps, dans les forêts, des quartiers de bois
de Hôtre entassés à côté de bois de Chêne; les femelles de Xylodiplosis
praecoæ Winn. se rendront en foule sur la surface de section de ce
dernier pour y déposer leurs œufs, mais aucune ne s’aventurera sur
le bois de Hêtre. Les femelles d’Endaphis perfidus Kieff. déposent leurs
œufs sur le corps des Aphides, mais je n’en ai jamais vu pondre sur la
feuille qui portait ces derniers. L'instinct de propagation a donc ici une
double direction : il porte la Cécidomyie femelle non seulement à pon-
dre, mais à le faire sur la plante nourricière de préférence à toute
autre. Chez les espèces obtenues par éclosion et conservées en capti-
vité, on peut remarquer au contraire qu'elles déposent leurs œuis
même sur des plantes qui ne peuvent pas nourrir leurs larves; bien
plus, on les voit fréquemment pondre sur la paroi en verre du bocal
qui les emprisonne ; d’autres fois on peut même les voir pondre, alors
qu’elles sont placées sous le microscope, sur la lame porte-objet, et re-
couvertes par la lamelle couvre-objet. Dans tous ces cas on peut ad-
mettre que l’insecte qui, du reste, vit moins longtemps et vole plus
lourdement en captivité qu'à l'air libre, était à son déclin, et que,
n'ayant plus la force ou la possibilité de rechercher la plante nourri-
cière, il obéit du moins, en pondant même à n'importe quel endroit, à
une des deux directions de l'instinct de propagation.

Beaucoup d'auteurs admettaient que les femelles des Cécidomyies
perforaient le tissu végétal pour y déposer leurs œuis. Il est certain
que, dans la plupart des cas, l’oviducte de la femelle n’est pas apte à
forer. Seuls les genres Asphondylia H. Lw., Schizomyia KielT., Monar-
thropalpus Rbs. et Choristoneura Rbs. renferment des espèces dont
la tarière parait capable de perforer un tissu végétal, mais je n'ai pas
encore pu m'assurer si cette perforation a réellement lieu. Laboulbène
l'affirme pour Monarthropalpus buxi Lab. : « C’est au moyen de sa ta-
rière, écrit-il, que la femelle dépose ses œufs dans les feuilles du Buis.
M. Jules Fallou, qui à pu suivre la femelle pendant la ponte, m'en à
raconté les particularités de la façon suivante : La ponte dure 12 à
1% minutes. Les femelles se posent sous la feuille du Buis, puis elles

(81) Cécidomyides d'Europe et d’Algerie. 261

enfoncent leur tarière par des mouvements alternatifs de va-et-vient.
Elles se reposent au bout de six minutes, puis aux deux tiers du temps
complet. Pendant le dernier tiers de la ponte, la femelle imprime au
corps un mouvement de rotation; il est probable qu’alors elle dépose
son œuf, puis elle s'échappe et cherche une autre feuille » [34%,
p. 323]. « M. Fallou m'a montré les œufs déposés dans les feuilles
du Buis. Ils ressemblent à ceux qui ont été extraits du corps » [ibid.
p. 31].

En observant la ponte de Contarinia pulchripes Kieff., j'ai vu la fe-
melle introduire sa tarière à travers une valve de la gousse du Genêt;
ouvrant ensuite cette gousse, j'ai trouvé un amas d'œufs pédonculés
contre une jeune graine, mais en examinant attentivement à la loupe
la surface de cette gousse ainsi que de celles sur lesquelles javais re-
marqué des pondeuses, je pus voir que les trous n'étaient pas frai-
chement forés, mais un peu noirâtres ; comme, d'autre part, des œuis
non pédonculés et beaucoup plus gros que ceux de la Cécidomyie se
trouvaient à l’intérieur de ces gousses, il en faut conclure que les ou-
vertures ont été faites par des Apionides ou par des Chalcidites dont
les jarves se voient en abondance plus tard, et que les Cécidomyies
en ont profité. On se trouve donc ici devant un cas de symbiose.

GÉNÉRATION. — Il est probable que la parthénogénèse n’existe pas chez
les Cécidomyies. J'ai vu bien des fois des femelles non fécondées dé-
poser leurs œufs à l’endroit où elles se trouvaient et jamais il n’en est
sorti une larve; le contraire avait lieu pour les femelles fécondées.
Enock et Marchal font la même remarque pour Mayetiola destructor
Say et avenae March. Il semble donc que ces Diptères ne se propagent
à l’état d’imago que par génération sexuée, et à l’état larvaire par pæ-
dogénèse, comme nous le verrons en traitant des larves. Quant au
nombre de générations dans une année, il varie selon les espèces.

Dans beaucoup de cas il n’existe qu’une seule généraiion par an,
dans d’autres on en distingue plusieurs. D’après les observations de
M. Marchal, Mayetiola destructor Say peut, si elle trouve les circons-
tances favorables pour son développement, présenter jusqu’à six gé-
nérations par an, mais dont la plupart sont partielles.

II. — Caractères généraux de la Nymphe.

Nous traiterons successivement : 1° du passage de la larve à l’état de
nymphe, 2° de la morphologie de cette nymphe, 3° de son enveloppe,
4° du lieu, de la durée, de l’époque et des conditions de la nymphose,
enfin 5° des mouvements de la nymphe.

V
262 J.-J. KiEFrEr. (82)

1° Passage de l’état larvaire à l’état nymphal.

Dans son Étude sur les Cécidomyies des céréales, M. le Docteur P. Mar-
chal décrit ainsi le passage de la larve à la nymphe chez Mayetiolu des-
bructor Say : « Pendant cette période de repos s’accomplissent les phé-
nomènes préparatoires de la nymphose. Le sac céphalique qui contient
les histoblastes des antennes, des veux et des parties céphaliques adja-
centes est facilement visible par transparence; il en est de même des
histoblastes des pièces buccales, des pattes, des ailes et des balanciers,
et l'on peut suivre leur développement graduel. Lorsque le moment
de l'apparition de la nymphe est proche, la peau est complètement
tendue, et entre elle et la nymphe se trouve une mince couche de li-
quide. A ce moment on voit encore battre le cœur. Ce stade est celui
de pronymphe.. A ce stade, le sac céphalique commence déjà à se
dévaginer, et son orifice, par lequel passe l'extrémité de l'antenne,
s’est notablement élargi. A mesure que la pronymphe se gonfle et que
l'orifice du sac s’élargit, les organes contenus dans le sac qui se déva-
gine se trouvent graduellement refoulés au dehors. La peau se tend
enfin en avant du corps, la nymphe se dégage alors de sa peau larvaire
el se trouve mise à nu; en même temps, le sac céphalique s’est entiè-
rement dévaginé en faisant apparaître les différentes parties qu'il conte-
nait dans leur position définitive, et en entraînant à sa suite le cerveau
qui se trouve logé dans la tête, Le disque oculaire de concave est de-
venu convexe; les antennes se sont dépelotonnées, en outre les nom-
breux plissements transversaux qui existaient sur toute leur longueur
se sont étendus, de sorte qu’elles paraissent beaucoup plus longues.
Il en est de même de tous les appendices. Pendant le stade correspon-
dant à la pronymphe, et seulement pendant ce stade, les trachées m'ont
paru vides d'air » [446, p. 27].

2° Morphologie de la Nymphe.

Il est assez difficile de découvrir les nymphes des Cécidomyies qui se
métamorphosent en terre; il faut pour cela, quand les éclosions com-
mencent, remuer la terre de laquelle sortent les Diptères et chercher à
découvrir les cocons ellipsoïdaux et couverts de terre, qui renferment
les nymphes. Même les nymphes qui se transforment dans la cécidie.
mais dans un cocon, ne peuvent pas toujours être extraites facilement
de leur enveloppe et il faut bien des précautions si l’on veut déchirer
cette dernière sans entamer en même temps la nymphe. Mais si on
ne veut étudier que la morphologie, il existe un autre procédé qui est

(83) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 263

fort simple. Au moment de l’éclosion, la dépouille nymphale, c’est-à-
dire la peau de la nymphe, reste fixée à l'endroit où l’imago en est
sortie ; on la trouvera donc, émergeant à moitié de terre, ou bien fixée
par sa base à l'ouverture de la galle ou dans une fente d’écorce, sui-
vant que l’éclosion a eu lieu dans l’un ou l’autre de ces endroits; par-
fois l’imago la traine encore avec elle, n’ayant pu réussir à se dégager
complètement, En règle générale, cette dépouille est molle, souple et
parfaitement transparente ; chez les Asphondylia toutefois elle est brune,
chitineuse et dure ; chez Cecidomyia pini D.G. elle est également bruneet
chitineuse, mais een en partie et moins fortement. Que l’on mette
cette dépouille nymphale sur une lame de verre, qu’on lPhumecte avec
de l’eau, qu'on la comprime ensuite avec une épingle de façon à en
faire disparaitre les plis et les bulles d’air, et l’on obtiendra en quel-
ques instants une dépouille parfaitement transparente et se prêtant très
bien à l'observation.

Comme les chrysalides des Papillons, les nymphes des Cécidomyies
sont conformées de telle façon qu'on y reconnait presque toutes les
parties de l’insecte parfait; elles ressemblent par là à celles des autres
Nématocères et diffèrent d’une façon considérable de celles des Muscides
qui sont de véritables pupariums.

La coloration est blanche ou rougeâtre au commencement; les yeux
prennent ensuite une teinte brune, puis noire; le reste du corps s’as-
sombrit à mesure que le moment de l’éclosion approche ; quand ce mo-
ment est arrivé, la ligne dorsale du thorax se fend dans presque toute
sa longueur. Voici en quels termes Laboulbène décrit l’éclosion de Wo-
narthropalpus buxi Lab. : « C’est le matin qu’on peut être sûr de voir
le curieux spectacle d’une nymphe qui, taraudant avec ses saillies
frontales la mince pellicule, apparaît au dehors. Cette nymphe est agile,
car elle s’agite vivement toutes les fois qu’on l’inquiète ou qu’on la met
à découvert ; au moment où elle doit se transformer, elle sait fort bien
trouver le petit espace arrondi et rendu très mince par la larve pré-
voyante, Une partie de la tête est dégagée, le thorax apparaît, puis la
nymphe avance encore, dirigée en bas, car c’est toujours sur la partie
inférieure des feuilles de Buis qu'est le point de sortie dont je parle.
Après une série de temps de repos, le thorax s’est ouvert et le corps
sort lentement. On voit se détacher d’abord les antennes, si c’est un
insecte femelle, les ailes, puis les pattes. Si c'est un mâle, les ailes, les
pattes antérieures sont retirées, puis les intermédiaires et les longues
antennes viennent les dernières. Enfin, après avoir dégagé toutes ses
pattes, la Cécidomyie parvient à faire sortir l'abdomen du fourreau
nympbhal et elle prend position sur ses longues jambes en remuant ses

”
264 J.-J. KigFFer. (84)

ailes encore petites et noirâtres, tandis que son corps est d’une cou-
leur blanchâtre. Elle acquiert peu à peu sa teinte orangée, elle essaie
ses ailes devenues transparentes et si délicatement frangées, puis elle
s'envole, s’abaissant et se relevant par petites saccades » [344,
p. 30-31].

Comme nous venons de le dire,la peau de la nymphe est habituelle-
ment transparente. Chacune des antennes est renfermée dans une gaine
avec des articulations plus ou moins distinctes et correspondant aux
articles des antennes; ces deux gaines se courbent au-dessus des
yeux pour se rapprocher ensuite sur la poitrine, sur le bord anté-
rieur des ailes (pl. 23, fig. 10-14). Selon Bouché, Winnertzia sa-
licis Bouch. aurait les étuis des antennes hérissés de soies, mais ce doit
ètre une erreur; toutes les espèces observées jusqu'ici, y compris celles
du genre Winnertzia Rond., ent ces organes entièrement glabres. Cha-
cun des palpes est également renfermé dans une gaine plus ou moins
courbée à sa base et remontant parallèlement au bord interne de l'œil,
mais non articulée; une autre gaine renferme les parties buccales
(pl. 24, fig. 3 et 12). Les pattes et les ailes sont renfermées dans des
fourreaux particuliers ; ceux des paites postérieures sont les plus longs
et situés en dehors, ceux des pattes antérieures les plus courts et placés
en dedans. Il est à remarquer que chez les individus brachyptères, le
fourreau des ailes est néanmoins aussi grand que chez les sujets nor-
maux, et que l'aile dans ce cas ne le remplit qu’en partie.

Laboulbène a déjà remarqué qu’on pouvait distinguer les sexes pen-
dant la nymphose. Le mâle se distingue en effet par le fourreau de Ja
pince à l'extrémité de son corps. et par le fourreau antennaire ordi-
nairement plus long, surtout chez les Diplosides.

Les différents organes ou téguments visibles sur la surface de la
nymphe peuvent être groupés en papilles, verrues, spinules, armures
et stigmates.

I. PAPILLES ET SOIEs. — Leur office nous parait être celui d'organes
tactiles. Nous distinguons ici les papilles cervicales, faciales, thoraci-
ques, dorsales et latérales.

1. Papilles cervicales (Papillae cervicales KielT., mars 1895 [295)).
Les anciens auteurs tels que Dufour, 1841 et 1845, avaient déjà remar-
qué sur le vertex de la nymphe des Cécidomyies, deux soies plus ou
moins longues, que Laboulbène, en 1857, désigna du nom de soies
cervicales, et Wacht}, plus tard, de celui de Scheitelborsten.

En réalité, il s’agit ici de papilles, avec ou sans soie, situées en ar-
rière de l'insertion du fourreau des antennes. Voici en quels termes j’ai

(85) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 265
fait voir en 1895 qu'elles sont toujours au nombre de quatre et non pas
de deux, comme on l'avait cru jusqu'alors : « De chaque côté du vertex
se voit un mamelon portant deux papilles ; l'extérieure de ces papilles se
termine toujours par une soie ordinairement fort longue, tandis que
l'intérieure, plus petite, est toujours dépourvue desoie ; entre les deux
mamelonsse voit unearête transversale, plus ou moins chitineuse » [296],
diversement conformée selon les espèces (pl. 24, fig. 18, a) et pouvant
aussi faire entièrement défaut. J'ai constaté depuis cette époque, que
la papille interne peut également porter une soie, mais qui est alors
beaucoup plus petite que l’externe. De même la papille externe peut
être dépourvue de soie; en ce cas, les soies du vertex font donc entiè-
rement défaut, ce qui n’a jamais lieu pour les papilles elles-mêmes.

2. Papilles faciales (Papillae faciales Kieff., mars 1895 [295]; Setae
rostrales et infra-oculares Rübsaamen, juillet 1895 [637]). Au-dessus
des parties buccales, entre les deux yeux, on voit de chaque côté une
ou deux papilles, dont l’une est habituellement munie d’une soie, tan-
dis que l’autre en est dépourvue; nous les avons nommées papilles fa-
ciales supérieures; chez les Cécidomyies elles sont plus rapprochées du
bord inférieur des yeux que du bord supérieur (pl. 24, fig. 3), tan-
dis que l'inverse a lieu pour les Lestrémines et les Hétéropézines
(pl. 24, fig. 12). Entre la base du fourreau des palpes et le bord in-
férieur des yeux, se voit chez les Cécidomyines, un groupe de trois pa-
pilles généralement munies d’une minime soie (pl. 24, fig. 3), ou,
chez les Lestrémines, une papille unique munie d’une longue soie, à
côté de laquelle se trouve parfois une papille sans soie (pl. 24, fig. 12);
ce sont les papilles faciales inférieures. Enfin au bord supérieur et ex-
terne des yeux apparaît encore une autre papille portant une longue
soie chez les Lestrémines (pl. 24, fig. 12), et habituellement dépour-
vue de soie chez les Cécidomyines, c’est la papille faciale externe, que
j'ai considérée, en la signalant pour la première fois, comme faisant par-
tie des papilles latérales.

3. Papilles thoraciques (Papillae thoracales Kieff., 1. e.). Le thorax des
nympbhes présente, d’une facon peu distincte, trois segments dont le
dessus est lisse et glabre, à l'exception des sutures qui sont habituel-
lement un peu rugueuses ou couvertes de rides. Chacun de ces seg-
ments offre, de chaque côté de la suture médiane et longitudinale qui
se déchirera au moment de l’éclosion, une rangée transversale de trois
papilles, dont la première et la dernière sont munies d’une soie; les
deux premiers segments ont en outre, dans le même alignement, deux
papilles portant chacune une soic; en dehors de celles-ci, mais seule-

+
266 J.-J. Kikrrer, (86)

ment au premier segment, se voit encore une papille mais dépourvue
de soie, Chez les Cécidomyines, ces soies sont toujours très petites et,
par suite, difficiles à découvrir; chez les Lestrémines, celles des deux
premiers segments sont longues et très apparentes.

4. Papilles dorsales (Papillae dorsales Kieff., 1. c.). Les huit segments
abdominaux portent sur le dessus, entre les deux stigmates, mais plus
bas qu'eux, une rangée transversale de six papilles, dont ordinaire-
ment lexterne de chaque côté, et parfois toutes sont munies d’une
courte soie; le huitième segment abdominal fait exception, en ce sens
que le nombre des papilles dorsales n’y est jamais de six, mais seule-
ment de deux chez les Cécidomyines, à l'exclusion du groupe des
Épidosides (pl. 24, fig. 10), ou bien de quatre chez les Lestrémines
et le groupe des Épidosides (pl. 24, fig. 7); dans le premier cas le
segment anal offre sur le dessus, de chaque côté, une papille, et dans
le second cas, trois papilles munies d’une courte soie.

ÿ. Papilles latérales (Papillae laterales Kieff., 1. e.). De chaque côté
des segments thoraciques se voient deux papilles latérales (pl. 23, fig.
15, et 24, fig. 6); de même, les segments abdominaux présentent de
chaque côté, en dehors du stigmate, deux, trois ou quatre papilles, dont
l’une appartient au dessus, les autres au dessous du segment. Toutes
les Cécidomyines, à l'exception des Épidosides, sont dans le premier
cas: toutes les autres dans le second. Dans le genre Aprionus, la soie
que porte la première des papilles latérales est fort longue, parlois
beaucoup plus longue que le segment lui-même (pl. 23, fig. 15, et 24,
fig. 7).

IT. VERRUES ABDOMINALES ( Verrucae abdominales Kieff.,1.e.). — Tandis
que le thorax des nymphes est ordinairement lisse, rarement rugueux
ou chagriné, par exemple chez Winnertzia, leur abdomen est toujours
couvert de petites verrues pointues et dirigée en arrière (pl. 24, fig.
10). Leur but est de favoriser les mouvements de la nymphe lors-
qu’elle veut se déplacer, mais surtout au moment de l’éclosion. Comme
pendant ces mouvements les segments rentrent un peu les uns dans
les autres, les verrues abdominales font défaut sur le dernier quart
des segments, c’est-à-dire sur la partie qui rentre sous le bord anté-
rieur du segment suivant.

IE. SPINULES DORSALES (Spinulae dorsales Kieff., 1. e.). — Beaucoup
de nymphes portent sur le dessus des segments abdominaux, au bord
antérieur, plusieurs rangées transversales de spinules brunes, rarement
subhyalines, dirigées en arrière et groupées de façon à former un arc

(87) Cécidomyides d'Europe et d’Algerie. 267

de cercle (pl. 2%, fig. 10). Leur partie médiane et leur extrémité
sont ordinairement plus chitineuses que les parties latérale et ba-
sale; parfois elles sont plus ou moins profondément bifides (pl. 24,
fig. 41); Perris les désignait déjà du nom de spinules, en 1870. Elles
manquent toujours au premier segment abdominal et ordinairement
aussi au segment anal; elles ne forment donc habituellement que sept
séries, réparties sur les segments abdominaux 2 à 8. Dans certains
genres, par exemple Asphondylia H. Lw., elles ne font jamais dé-
faut; dans d’autres, par exemple Oligotrophus Latr., elles manquent
habituellement, enfin dans d’autres, par exemple chez Perrisia Rond.,
elles sont tantôt développées, tantôt nulles. Le but de ces spinules
est le même que celui des verrues abdominales.

IV. ArMURES. — Nous distinguons une armure cervicale, frontale.
sternale et latérale.

1. Armure cervicale où Cornes céphaliques (Aculei verticales Wachtl,
4881). La plupart des nymphes sont armées, sur le haut de la tête, de
deux prolongements pointus, diversement conformés, bruns, durs,
fixés à la base du fourreau des antennes (pl. 24, fig. 43). Ils ont été
signalés et figurés d’abord par De Geer en 1782 [96 , p. 154, fig. 13].
Il est vrai que l’auteur suédois les nomme « deux petits organes.
respiratoires de forme conique », de sorte que l’on pourrait croire
qu'il est question de stigmates thoraciques, mais le dessin qu'il en
donne, ne laisse aucun doute à ce sujet. Laboulbène leur à donné,
en 1846, le nom de cornes céphaliques. Leur forme est ordinairement
conique, parfois avec une dent à leur base, comme H. Loew l'a déjà
indiqué en 1850 pour Rhabdophaga salicis D. G. et Acodiplosis inulue:
H. Lw., d’autres fois dentelée, par exemple chez Asphondylia H. Lw.

Quant à la destination de cette armure, les auteurs s'accordent à
dire qu’elle sert à perforer, au moment de l’éclosion, la mince paroi
du cocon ou de la galle, qui sépare l’insecte du dehors. C’est ainsi que
Dufour écrivait déjà en 1841 de la nymphe de Rhabdophaga saliciperda
Duf. : «Nymphe terminée en avant par un rostre droit et bifide, muni
d’un poil de chaque côté de sa base... Rien de plus curieux que la
physionomie bizarre de cette nymphe dont la tête semble se terminer
par une sorte de hure de deux pièces mandibuliformes, qui font l’of-
fice de tarière pour percer le bois. » Un peu plus tard, en 1846, le
même auteur écrit de la nymphe de Lasioptera eryngii Dui. : « La
larve, par un admirable instinct, par une mission toute providentielle,
conduit sa galerie jusqu’à l’épiderme cortical de la galle, de manière
que ce mince diaphragme la met à l'abri des agents extérieurs. Avertie

”
268 J.-J. KiEFFEr. (88)

de sa métamorphose en nymphe, elle vient se placer justement tout
près de cette vitre membraneuse. La nymphe, en travail d’insecte ailé,
perce avec la double pointe de sa tête le diaphragme. Au moyen de
mouvements successifs insensibles et à la faveur de sa forme cylin-
drique elle s'engage jusqu’au quart postérieur de sa longueur dans
l'ouverture qu'elle vient de pratiquer ». Winnertz reproduit de même
l'assertion de H. Loew, d’après laquelle les cornes céphaliques « per-
mettent à la nymphe de transpercer la galle »,

On peut remarquer en effet, que les nymphes qui n’ont rien à per-
cer ni à soulever, sont inermes, tandis que toutes les autres ont une
armure céphalique. C’est par ce caractère que j'ai distingué Rhabdo-
phaga dubia Kieff. de R. salicis Schrk. avec laquelle cette espèce avait
été confondue jusque-là, parce que toutes deux forment sur les ra-
meaux des Saules des renflements arrondis et d’égale grosseur. Le
moment de la maturité est-il arrivé, la larve de R. salicis commence
le long et pénible travail de perforation à travers la couche ligneuse
et corticale et ne laisse entre elle et le dehors qu’une pellicule
mince et transparente; ce travail achevé, elle se change en nymphe.
Celle de R. dubia au contraire, guidée par un tout autre instinct,
n'essaie pas d'entreprendre un travail aussi pénible et se change en
nymphe au centre du renflement. Que l’on compare maintenant les
nymphes des deux espèces; celles de R. salicis placées de divers côû-
tés, chacune derrière la membrane recouvrant ouverture circulaire
préformée par la larve, sont munies d’une forte armure céphalique,
avec laquelle elles pourront transpercer cette membrane; celles de
de R. dubia au contraire, demeurées au centre de la nodosité, sont
entièrement inermes, et l’on se demande comment elles en sortiront.
De Geer s’en est déjà préoccupé, il y a plus de cent ans, et il nous a
transmis son observation qui est parfaitement exacte : « Je désirais
savoir, écrit-il, comment la petite mouche, qui n’a ni mandibules ni
dents, s’y prendrait pour sortir de cette épaisse galle ligneuse. J'ai re-
marqué qu'elle le fait avant de se débarrasser de sa dépouille nym-
phale et à un endroit préparé par la nature. Les bourgeons qui re-
couvrent la nodosité et qui, dans des conditions normales, auraient
donné des rameaux, se sont desséchés et ont occasionné la formation
d’un canal plus ou moins obstruë par les écailles desséchées du bour-
geon et communiquant avec la cavité larvaire. La nymphe se hisse
d’une cavité dans l’autre, jusqu’à ce qu’elle soit enfin arrivée à l'air
libre, c’est-à-dire à l’endroit du bourgeon, et que sa moitié anté-
rieure dépasse la surface de la nodosité; l’imago se débarrasse alors
de sa peau de nymphe qui reste fixée à l'ouverture » [96, p. 156].

(89) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 269

Néanmoins on a tort de généraliser, car ces cornes céphaliques ne
servent pas toujours à percer, mais parfois seulement à soulever l’o-
percule de la galle. En effet, dans bien des cas, par exemple chez
Rhopalomyia syngenesiae H. Lw., la larve se préforme au sommet de la
galle un espace circulaire dont les bords seuls sont entamés en forme
d’anneau ; au moment de l’éclosion l’insecte pousse avec ses deux lon-
gues cornes céphaliques contre cet opercule qui se détache et tombe.
Fr. Lôw à fait la même remarque pour Oligotrophus Reaumurianus
Fr. Lw. : « Avant de se métamorphoser, lalarve préforme tout autour
de la pointe conique de la galle un sillon annuliforme, dont le but est
de permettre à la nymphe de se dégager, car il se forme de la sorte
une espèce de couvercle que la nymphe, au moment de l’éclosion,
n'aura qu’à soulever pour se trouver en liberté » [415, p. 390].

2. Armure frontale (Aculei frontales Wachtl, 1. e.). Cette armure,
ainsi que la suivante, n’a encore été observée que sur les Asphondyltia.
Elle consiste en deux saillies chitineuses, pointues, soudées par leur
base et situées vers le milieu de l’espace qui sépare les yeux, et se di-
rigeant obliquement par en haut.

3. Armure siernale (Aculei sternales Wacht], I. c.). Elle se trouve
non point sur la poitrine, comme le nom semblerait l'indiquer, mais
entre les bords inférieurs des yeux, au-dessus des fourreaux des
palpes. Elle consiste en un prolongement oblique, court et large, muni
de trois dents, dont l'intermédiaire est ordinairement pointue et les
deux latérales obtuses (pl. 24, fig. 40).

4. Armure latérale (Aculei laterales). J'appelle de ce nom deux
saillies brunes et chitineuses, écartées l’une de l’autre et fixées au bord
interne des deux yeux. On la trouve chez quelques espèces, mais elle
est surtout bien apparente chez Rhopalomyia Giraldii Kieff. et Trott. ;
ici les deux saillies sont aussi larges que hautes et fixées perpendi-
culairement à la surface.

V. STiGMATES. — La nymphe, de même que l’imago et la larve, offre
neuf paires de stigmates, dont la première se trouve sur le prothorax
et les autres sur les huit segments abdominaux. Les stigmates du
thorax diffèrent par leur forme de ceux de l’abdomen; chez les Céci-
domyines, ils paraissent habituellement sous forme de tube brun, droit
ou arqué, ordinairement aminci vers le bout (pl. 24, fig. 8-9). Une
trachée parcourt ce tube jusqu’au sommet et elle parait se souder avec
lui au moins dans la partie terminale; à cet endroit et parfois sur
toute la longueur, on remarque sur le stigmate une ou plusieurs

»
270 J.-J. KIkFrERr. (90)

rangées longitudinales de petites ouvertures circulaires par lesquelles
l'air peut pénétrer, soit que ces ouvertures soient entièrement libres,
soit qu'elles demeurent recouvertes par une membrane transparente ;
vu de côté, le stigmate paraît dentelé, ce qui indique que chaque ou-
verture est reliée par un minime canal à la trachée (pl. 24, fig. 8).

Chez les Lestrémines, les stigmates thoraciques ne sont pas proémi-
nents, mais paraissent sur le flanc d’un mamelon (pl. 2%, fig. 6) sous
forme de plaque faiblement convexe, allongée ou ovalaire, percée de
minimes ouvertures libres ou avec membrane invisible. Chez Monardia
stirpium Kieff., ces ouvertures forment d'abord une rangée longitu-
dinale simple, puis deux, trois et enfin quatre rangées. Au sujet de
cette forme que j'ai signalée et figurée en 1895 [291], M. de Meijere
écrit en 1899 : « Avec de forts grossissements on aperçoit sur les
stigmates prothoraciques de Monardia van-der-Wulpi Meig. environ
vingt petits cercles, qui d’abord semblent être des ouvertures. Cepen-
dant en les comparant avec ce qui m'est connu sur les organes corres-
pondants d'autres nymphes, et aussi sur les stigmates des larves des
Diptères (!), je suis disposé à croire que dans ce cas il ne s’agit pas
«de véritables ouvertures, mais d’endroits couverts d’une membrane
extrêmement mince. Quand on observe le stigmate de côté, on peut
s'assurer que ces cercles sont situés à l'extrémité de tubes très courts
reliant la chambre terminale de la trachée avec l'extérieur. Il y a done
ici la même structure que dans les stigmates de plusieurs larves de
Diptères. J'ai adopté le nom de bouton (Knospen) pour lesdits tubes »
(480, p. 144]. On trouve une disposition analogue chez plusieurs Win-
nertzia Rond., mais alors le stigmate est circulaire et non allongé
(pl. 24, fig. 4). Chez une Sciarine, j'ai remarqué une forme analogue
à celle des Lestrémines, avec celte différence que les ouvertures du
stigmate se présentent sous l'aspect de cinq fentes transversales et
ellipsoidales.

Les stigmates abdominaux sont tantôt proéminents sous forme de
tubes, par exemple Lestodiplosis Kieff., Camptomyia Kieff., ete.
(pl 23, fig. 7), tantôt ressortant seulement comme une bosselette,
par exemple chez les Lestrémines, tantôt proéminents en forme de
tube sur les premiers segments et non proéminents sur les suivants,
par exemple chez Peromyia Kieff. Dans le second cas, leur forme
rappelle celle des stigmates thoraciques chez les mêmes espèces. C'est
ainsi que chez Monardia stirpium Kieff., les stigmates abdominaux

(1) Voir pe Meuere : Ueber zusammengeselzte Sligmen bei Diplerenlarven.
Tijdskrift voor Entomologie, XXXVIH, p. 65.

(94) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 274

sont à peine proéminents sous forme d’une bosselette circulaire ; sur
sa surface, cette bosseletie parait criblée de petites ouvertures, et
son bord parait orné d’une rangée de minimes petits cercles (pl. 24,
fig. 5). Chacun de ces petits cercles et chaque ouverture de la surface
sont en communication avec la trachée, au moyen d’un tube extrême-
ment petit.

3° Enveloppe de la Nymphe.

Quand une larve se métamorphose en terre, ce qui est le cas pour
la plupart des Cécidomyines, ou bien dans une cécidie non entièrement
close, par exemple Perrisia veronicae Vall., trifolii Fr. Lw., salicariae
Kieff., Arnoldia gemmae Rbs., etc., ou sur l'écorce, elle se forme habi-
tuellement une enveloppe que nous désignons du nom de cocon; le
contraire a lieu quand elle subit sa métamorphose dans le bois,
comme beaucoup de Lestrémines, ou sous l'écorce, comme Winnert-
zia, Camptomyia, etc., où enfin dans une cécidie bien close de toutes
parts, ce qui est le cas pour tous les Clinorhyncha, Baldratia, Asphon-
dylia, la plupart des Lasioplera et beaucoup d’autres espèces. Lorsque
la galle est hermétiquement fermée, mais sera munie d’une minime
ouverture quand elle se détachera du support, par exemple Mayetiola
fagi Hart., la larve ne forme pas de cocon pour la métamorphose,
mais se contente de fermer l'ouverture au moyen d’une membrane
transparente, dont la substance est produite par elle.

I. COULEUR, FORME ET CONSISTANCE DU COCON. — Si l’on compare les
enveloppes des diverses sortes de nymphes entre elles, on remar-
quera que leur couleur et leur forme sont variées. Leur couleur est le
plus fréquemment blanche ou un peu jaunâtre, par exemple chez Per-
risia violae Fr. Low, piri Bouché, etc., moins souvent brune, par
exemple chez Mayetiola, certains Épidosides, etc., rarement d’un
rouge ferrugineux, par exemple Perrisia mali Kiel. (1).

On peut distinguer les cocons doubles etles cocons simples. Le cas du
cocon double a lieu pour Cecidomyia pini D.G., comme De Geer avait
déjà remarqué. Ici le cocon extérieur est blanc, résineux, de forme
ellipsoïdale, pointu et libre à l'extrémité correspondant à la tête, ob-
tus au bout opposé; la partie par laquelle il est fixé dans le sens de
sa longueur à la face supérieure de laiguille est ouverte, de sorte que

(1) J'avais mis des larves de celte espèce dans une boite de fer-blanc, dont
le fond était humide et un peu entamé par la rouille ; grâce à cette humidité,
les larves se firent leur cocon et se métamorphosèrent, mais il est possible
que la couleur que présenta leur cocon fut due à la rouille de la boite.

279 JT. Kierrer. (99)

le cocon interne sépare seul la larve de son support. Mise dans de
l'alcool, cette enveloppe résineuse se dissout facilement et lon voit
apparaitre le cocon interne, soyeux et mince, composé de fils micros-
copiques.

Une seconde forme de cocon double est fournie par Holoneurus
Kieff.; ici le premier cocon a la forme d’un bouclier et l'apparence
d'une mince pellicule recouvrant le cocon interne.

D’après les observations de M. le D' P. Marchal, il en est encore de
même pour les Mayetiola où du moins pour W. destructor Say. I ré-
sulte en effet de ses études sur cette espèce, comme nous le verrons
encore plus loin, que le cocon « se trouve constitué par une mue
larvaire qui forme toute la couche dure, épaisse et brune, et par une
sorte de cocon très mince et soyeux qui la double et la tapisse inté-
rieurement. Cette structure mixte, qui n’a encore été signalée chez
aucun Diptère, ni, je crois, chez aucun insecte, mérite d'attirer l’atten-
tion, car elle établit un terme de passage entre les pupes habituelles
des Diptères (pupae coarctatae) et les larves qui pour opérer leur
nymphose se renferment dans des cocons ainsi que, chez les Cécido-
myies, certaines espèces en fournissent des exemples » [446, p. 22].

Thurauia aquatica Rbs. se fait également deux cocons; le premier,
d'un rouge brun, est formé de la peau de la larve, comme chez les
Mayetiola, et a l'aspect d’un puparium; le second est transparent,
piriforme, ouvert supérieurement et composé de fils assez espacés
et séparés l’un de l’autre par une matière semblable à du parchemin ;
mais, chose singulière, la larve sort du premier cocon avant d’avoir
formé le second, et remonte plus haut sur la plante où elle fabrique ce
dernier, dans lequel elle se métamorphose [642 bis, p. 59]. Nous avons
donc ici la transition entre le cocon double proprement dit, et le
cocon simple. Il est à remarquer que dans les quatre cas que nous
venons de citer et qui diffèrent notablement l’un de l’autre, le cocon
qui à été formé en dernier lieu est toujours composé de fils, au moins
en partie.

Les cocons simples sont le plus souvent de forme ellipsoïdale, rare-
ment ouverts supérieurement, par exemple chez Rhabdophaga rosaria
H. Lw., ou longitudinalement sur la partie qui touche le support,
comme chez Porricondyla atbimana Winn.; d'autres fois elle offre l’as-
pect d’un bouclier sous lequel la nymphe disparait complètement, par
exemple chez Colomyia Kieff. et Rübsaamenia KiefT.

IT. FORMATION DU COCON. — 1. Pour le cocon des Mayetiola Kieff. et le
premier cocon de Thurauia Rbs., l'examen microscopique montre

(93) Cecidomyides d'Europe el d'Algérie. 273

qu'ils sont formés aux dépens de la peau de la larve, comme Winnertz
l'écrivait déja. En effet, sa surface chitineuse et brune est divisée en
segments, mais d’une facon peu distincte, el ces segments sont par-
semés de petites verrues terminées par une spinule et munis en outre
d’une rangée transversale de 24 ou 26 petites nodosités. M. le D'Mar-
chal, qui a le mieux étudié la larve etla nymphe de Mayetiola destructor
Say, décrit ainsi ie cocon et sa formation [446| :

« Lorsque la larve a atteint toute sa croissance, elle devient turges-
cente; la peau se tend et la segmentation du corps s’efface; en même
temps sa transparence diminue et elle prend une opacité opaline, puis,
peu à peu, la couleur change; elle devient d’abord d'un jaune chair
testacé, puis ce jaune fonce de plus en plus jusqu'a devenir marron:
le puparium se trouve alors constitué, et l’on à sous les yeux une
petite coque allongée, dure, brune et sur laquelle on ne peut distin-
guer sans étude très attentive les détails de la larve, si bien que dif-
férents auteurs ont regardé cette coque comme étrangère à la larve et
résultant d’une sorte de sécrétion, opinion qui du reste semblerait
confirmée par ce fait que l’on retrouve la larve revêtue de sa peau et
libre à l’intérieur de la coque qui la contient. La plupart des auteurs
s'accordent toutelois à la considérer comme résultant de l'induration
de la peau de la larve. En réalité cette coque, à laquelle nous donne-
nerons avec les auteurs anglais le nom de case pupule, à, lorsqu'elle
est entièrement constituée, une structure mixte qui m’avait pas en-
core été signalée. Elle est formée à l'extérieur : 4° par la cutieule de
la peau de la seconde forme larvaire, que celle-ci isole d'elle-même
par un processus analogue à celui des autres mues ; 2° par un revête-
ment de soie dont la larve, ayant revêtu sa troisième forme, tapisse la
paroi interne de la cuticule. La première couche externe est de beau-
coup la plus épaisse et existe seule au début.

«€ En suivant la formation du puparium il est facile de se rendre
compte de sa nature. Au début de sa formation, la peau de la larve
encore blanche, qui semble distendue par les liquides internes, s’in-
dure et s’épaissit, et avant qu'elle n'ait pris la teinte marron et l’opacité
caractéristique du puparium, on voit la larve revêtue d’une deuxième
euticule interne s’isoler et se rétracter à son intérieur. À ce moment
la peau externe étant encore translucide et n'offrant qu'une légère
teinte jaunâtre, il semble que l’on à sous les yeux deux larves emboi-
tées l’une dans l’autre, présentant chacune une tête testacée à parties
brunes et chitineuses tranchant nettement sur le reste du corps. Si
l’on ouvre la peau externe, on constate qu'entre elle et là larve se trouve
un liquide clair; on peut voir, à ce moment, une sorte de cordelette

Ann. Soc. Ent. Fr., LXIX, 1900. 18

»
27% J.-J. KIEFFER. (94)

s'étendre de la dépouille chitineuse de la tête à celle de la larve; cette
cordelette est la mue de la partie antérieure du tube digestif qui se
rompra ensuite quand la larve se rétractera davantage. La peau ex-
terne destinée à former la case pupale présente les mamelons coni-
ques que nous avons vus dans la seconde forme larvaire; on y re-
trouve également tous les détails de la tête et de l'anus; en revanche
on n'y voit trace ni des papilles, ni de la spatule sternale de la 3° forme
larvaire. Sur cette dépouille externe on voit en outre de nombreuses
petites aréoles arrondies ou elliptiques correspondant aux insertions
musculaires ; chaque ligne séparant deux segments successifs se trouve
ainsi représentée sur la case pupale par une série de petites surfaces
d’insertions musculaires symétriquement placées ; on en distingue sur
chaque interligne dix ventrales et de chaque côté trois latéro-dorsales.
En outre, sur chaque segment on rencontre un certain nombre d’in-
sertions musculaires symétriquement placées.

« Ces détails deviennent de moins en moins perceptibles à mesure
que la case pupale prend son caractère définitif et s’indure en prenant
une coloration foncée. Les détails de la cuticule céphalique deviennent
notamment entièrement méconnaissables, et celle-ci se rétracte et s’in-
vagine plus ou moins sous l'influence de la traction de la cordelette
dont nous avons parlé plus haut. Examinée au microscope, cette cou-
che formée par la cuticule modifiée de la seconde forme larvaire pré-
sente une structure fibreuse; les fibres, tout en étant anastomosées
entre elles, présentent une direction générale perpendiculaire à la sur-
face cutanée, et les espaces qu’elles limitent constituent un système de
‘analicules perpendiculaires à la surface; sur la paroi interne, elles
s’orientent au contraire dans une direction parallèle à la surface. Cette
structure se trouve interrompue au niveau des insertions musculaires
où la cuticule devient lisse et homogène, et autour des aréoles ainsi
déterminées les fibrilles affectent une disposition rayonnée. Dans toute
son épaisseur, la cuticule formant la case pupale est donc poreuse, et
on s'explique aisément la facilité avec laquelle elle absorbe l'humidité
et se laisse pénétrer par elle; dure et cassante à la sécheresse, elle est
au contraire souple et flexible à l'humidité. Cette dernière condition
est indispensable pour permettre l'éclosion lorsque le puparium a été
longtemps exposé à la sécheresse.

« La seconde couche, qui ne se rencontre que dans le puparium en-
lièrement constitué et ayant acquis sa consistance ainsi que sa teinte
définitive, forme une sorte de glacis soyeux blanchâtre à son intérieur.
A l'examen microscopique, sur les fragments mis en observation, on
voit souvent cette couche interne dépasser sur le bord des cassures la

(95) Cécrudomyides d'Europe et d'Algérie. 275
couche externe, et alors on constate nettement qu'elle est formée d'un
feutrage de fils soyeux entrelacés. »

2. Quant au cocon interne de Cecidomyia pini, la couche soyeuse et
interne des Mayetiola et les cocons des autres Cécidomyies, leur for-
mation à été diversement expliquée; il est bien possible que les co-
cons pour lesquels l'examen microscopique montre qu'ils sont formés
de fils entrelacés, soient produits d’une autre façon que les cocons non
composés de fils; en ce cas les deux explications qu'on à avancées
jusqu'ici et que nous allons exposer, pourraient être vraies simulta-
nément, mais pas pour les mêmes espèces. La plupart des anciens au-
teurs pensaient que les larves des Cécidomyies se filaient leur cocon,
comme le fontles chenilles. C’est ainsi que H. Loew [402] écrit : « Avant
la métamorphose, beaucoup de larves se filent un cocon blanc et
mince, dont les fils sont difficiles à reconnaitre ». C’est la même opi-
nion qu'émet M. le D: P. Marchal, quand il dit que les larves « tissent
un cocon soyeux » (/ e., p. 23) et quand il explique la formation de
la couche soyeuse et interne du cocon de Mayetiola destructor. « Les
longues glandessalivaires de lalarve, écrit-il, qui descendent jusque vers
l'extrémité postérieure du corps et dont les deux conduits exeréteurs
se réunissent en un conduit commun débouchant au niveau de la
ligula, doivent évidemment être regardées comme les organes produc-
teurs de la soie. L'expérience suivante le démontrera. Je pris une larve
dont le puparium venait de se constituer, et qui était en train d'opérer
à son intérieur la version dont nous aurons plus loin occasion de par-
ler, version qui a pour résultat de mettre sa tête là où se trouvait son
extrémité postérieure et vice-versa, Je la mis sur une lame porte-
objet, la recouvris d’une lamelle simplement posée dessus sans exercer
de pression et sans eau, puis je déposai le tout dans une chambre
humide. Le lendemain je vis que en avant de la larve et tout autour
de sa partie antérieure, à l'exclusion de sa partie postérieure, se trou-
vait tout un réseau soyeux, qui à l’œil nu avait l'apparence d’une
sorte de bave desséchée; au microscope, il apparaissait sous forme
d'un réseau filamenteux ; le fil, intriqué en tous sens, formait de nom-
breuses mailles irrégulières: la moitié postérieure de la larve restait
entièrement nue. La larve étant tournée de façon à présenter sa face
ventrale en haut contre la lamelle couvre-objet, elle n'avait pu arriver
à se retourner, par suite de la légère pression exercée par cette la-
melle; or, il est à noter que, dans ces conditions bien déterminées, la
lamelle avait été seule couverte par le réseau, il n’en existait nullement
sur la lame porte-objet, Ces faits montrent bien que la soie est sécrétée

276 J.-J. KIEFFER. (96)

en avant de l'animal et sur sa face ventrale: or il n’y à que les glandes
salivaires qui puissent lui donner naissance » [446, p. 21-22].

Ratzeburg à fait une observation analogue en 1841 sur Cecidomyia
pini D. G., mais sans arriver absolument à la même conclusion que
M. Marchal. Ayant extrait plusieurs larves de leur cocon, il leur présenta
des rameaux de Pin fraichement cueillis. Après avoir erré sur les ai-
guilles, les larves finirent par s’y fixer ; au bout d’une heure, l'examen
à la loupe fit voir que quelques gouttelettes de liquide s'étaient for-
mées tout autour de la tête qui était étroitement appliquée au support ;
ce liquide n'était pas fortement résineux, mais offrait néanmoins une
consistance visqueuse et épaisse. Ratzeburg espérait que les larves
finiraient par être couvertes de cet enduit, mais il n’en fut rien. Il en
cherche la raison dans ces deux faits, que les larves avaient dû être
affaiblies par suite de leur extraction du cocon, et que les aiguilles, en
se desséchant, ne pouvaient plus fournir aux larves le liquide néces-
saire (1). Il arrive à cette conclusion : « Je me crois autorisé à admettre
que le cocon résineux se forme aux dépens des sues résineux absorbés
par la larve: il serait difficile de déterminer si ces sucs sortent par la
bouche de la larve ou par l'orifice anal ou enfin s'ils sont le produit de
l'exsudation des grosses vésicules du dos; la première de ces trois h\-
pothèses concorde pourtant le mieux avec mon observation ».

Perris [576], ayant observé une larve de Mycétophilide et deux au-
tres larves de Diptères qui s'étaient fait une coque avec une matière
émise par leur anus, ou par un organe spécial situé près de la partie
postérieure de leur corps, pensait qu'il fallait expliquer de la même
facon la formation du cocon de Cecidomyia pini D. G.

Winnertz rejette l'opinion du filage du cocon et admet au contraire
que le cocon est le produit de l’exsudation de la larve [816, p. 497] : «Je
ne puis confirmer, écritil, l'assertion de plusieurs auteurs, d’après la-
quelle les larves de Cécidomyies se fileraient leur cocon. Mes observa-
tions me portent à admettre qu'elles exsudent en quelque sorte l’enve-
loppe soyeuse qui recouvre la nymphe et que cette masse se dépose à la
facon des cristaux, et forme ainsi un sac autour de la larve. Pour
plusieurs espèces, j'ai remarqué comment les larves s'étaient fixées à
une feuille; au bout de 24 heures il s'était formé tout autour d'elles et

(1) Mes observalions sur des larves extraites de cocons fixés à la paroi
d'une boîte de fer-blanc me font croire que, si ces larves ne pouvaient plus se
faire un nouveau cocon, c'estque les glandes ou les organes qui avaient fourni
la matière du premier ne renfermaient plus la matière nécessaire à un se-
cond.

(97) Cécidomyides d'Europe et d’'Algerie. 277
à une certaine distance d'elles un mince dépôt qui n'offrait aucune
trace de fils; petit à petit, ces dépôts en s’agglomérant, formaient des
parties filiformes (comme se forment certains cristaux en aiguille),
sans que la larve fit le moindre mouvement, ce qui n'aurait pu être
le cas, si elle avait participé activement à cette formation.

« Cette enveloppe est ordinairement achevée au bout de quelques
jours, et alors encore on ne peut trouver trace de fils au microscope. Si
M. Loew dit que la faculté de filer un cocon existe surtout chez les es-
pèces du genre Cecidomyia H. Lw., je dois faire remarquer que les
nymphes de la plupart de ces espèces sont en effet renfermées dans un
petit sac blanc, mais que je n'ai pu constater, pour aucune d’entre elles,
que ce petit sac fût un véritable cocon filé ».

Mes observations semblent confirmer l'opinion de Winnertz. Dans la
plupart des cas, l'examen au microscope démontre que le cocon n’est
pas composé de fils. Jai publié en 1891 [273, p. 262] et plus tard en
1894 [289] l'observation suivante : « Lorsque je découvris les larves
de Colomyia clavata Kieff. recouvertes déjà de leur enveloppe blan-
che, j'en remarquai plusieurs qui portaient sur le dessus des segments
abdominaux, l’anal excepté, une rangée transversale de 6 à 8 corpus-
cules oviformes et vides, correspondant par conséquent aux papilles
dorsales. Ces corpuscules, se gonflant toujours, finirent par se toucher,
s'ouvrir, s'étaler et se confondre les uns avec les autres; en cet état
leur substance ressemblait exactement à celle de la paroi inférieure de
l'enveloppe, tandis que la surface supérieure de celle-ci était tout à
fait lisse (fig. 8). Il me semble donc pouvoir conclure de là, qu’au
moins dans le cas particulier, l'enveloppe estle produit d’une sécrétion
qui à lieu par les papilles dorsales de l’abdomen, travail auquel les seg-
ments thoraciques et le segment anal ne prennent point part. Or nous
avons vu que chez Diplosis pini D.G., ce sont précisément les papilles
sétigères de l'abdomen qui sont renflées en vésicule, et que celles
du thorax et du segment anal ne montrent pas cette forme. I] semble
donc probable que ces vésicules ont comme destination d'élaborer et d’é-
mettre ensuite le suc qui servira à la formalion de la coque résineuse ».

Une seconde observation, que j'ai publiée également en 1894 (1. c.),
se rapporte à une larve de Campylomyza dont les papilles dorsales ont
pris la forme d’appendices écailleux, semblables aux fruits du sapin :
« Une larve qui s'était fixée à la surface du bois, me parut, au second
ou au troisième jour, être revêtue d’une matière blanche, moussue,
composée de filets longitudinaux et transversaux. Je détachai cette
larve avec précaution au moyen d’une épingle, puis je l’examinai au
microscope. Il me fut alors facile de voir que la matière blanche n'é-

278 IT. Kicrrer. (98)

lait pas continue, mais qu'elle recouvrait seulement les appendices
dorsaux et latéraux et qu'elle était composée de petits fragments li-
néaires paraissant sortir d’entre les écailles ou verrues de ces appen-
dices. Les autres larves qui s'étaient réfugiées dans le bois étaient à
ce moment presque toutes changées en nymphes et revêtues d’une en-
veloppe d'un blanc grisâtre, fait unique dans le groupe des Campylo-
myza, car toutes les espèces que je connais se métamorphosent sans se
lormer d’enveloppe. Je ne crois donc pas faire erreur en considérant
ces appendices dorsaux et latéraux comme des organes secrétant la
matière dont se compose l’enveloppe de la nymphe ».

Ajoutons encore que les larves que j'ai examinées fréquemment
pendant qu’elles se métamorphosaient contre la paroi d'un bocal en
verre, paraissaient parlaitement immobiles.

Tout récemment [642, p. 547], M. Rübsaamen, après avoir repro-
duit le passage de Winnertz cité plus haut, ajoute : « Il me paraît cer-
ain que Winnertz n'a pas entièrement tort sous plus d’un rapport,
Chez bien des Cécidomyies, le petit sac parait en réalité se former selon
la façon indiquée par Winnertz, de sorte qu'on peut le considérer réel-
lement comme un produit d’exsudation. C’est ainsi que j'ai vu des
larves de Colomyia clavata Kieff. sur du bois de Bouleau, paraissant
enveloppées d’un cocon. En réalité, ce n'était qu'une enveloppe en
forme de bouclier, semblable à celle des Diaspides, sous laquelle la larve
était couchée. Examinée au microscope, cette enveloppe montrait une
pellicule mince et de consistance unilorme; un grossissement de 500
ne put faire voir trace de fil. En tout cas on ne peut nier la possibilité
que de pareilles enveloppes ne soient le produit d’une exsudation de
là peau, qui s’est durei à l'air. Les papilles de la larve sont-elles l’or-
gane de cette exsudation, et de quelle manière cela a-t-il lieu, c’est ce
qui reste encore à éclaircir. Sur beaucoup de cocons on peut distin-
guer de véritables fils, mais la présence de ces fils ne prouve pas plus
que la larve les ait filés avec sa bouche, et c’est ce que Vinnertz vou-
lait surtout nier, que leur absence ne prouve à elle seule que le cocon
soit à considérer comme un produit d’exsudation ».

En tout cas, quel que soit leur mode de formation, il est différent
du précédent, c’est-à-dire l'enveloppe n’est jamais le résultat d’une
mue larvaire. M. Marchal écrit à ce sujet [446, p. 23] : « Étant donnée
la structure signalée chez Cec. destructor, il y avait lieu de s'assurer
de la réalité de ce second mode de pupation (1!) ; car une dépouille lar-
vaire transparente, recouvrant le cocon à l'extérieur, aurait pu facile-

(1) C'est-à-dire du mode qui n'est pas le résultat d'une mue larvaire.

(99) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 279

ment échapper à un observateur non prévenu. Je me suis assuré en
examinant les cocons de Cecid. ericae-scopariae Duf. et ceux de Da-
syneura Kiefferi March., qu'ils étaient entièrement libres et n'étaient
revêtus d'aucune enveloppe extérieure; ceux d’ericue-scopariae ren-
fermaient la nymphe de l’Insecte et une dépouille larvaire pourvue
d'une spatule sternale et abandonnée de la nymphe ».

CoxcLusioN. — Nous arrivons donc à la conclusion suivante. On
peut distinguer chez les Cécidomyies deux mode de pupation.

Ac Mode. La nymphose s'opère à l’intérieur de la peau dureie de la
larve, c’est-à-dire, dans un puparium improprement dit, et l’insecte a u
moment de l’éclosion en sort par un des pôles, comme chez les Muscides :
mais tandis que chez ces dernières la dépouille larvaire aux dépens de
laquelle se forme le puparium est le résultat de la dernière mue et
que l’insecte passe en même temps à l’état de nymphe, chez les Céci-
domyies, au contraire, elle n’est que le résultat de l’avant-dernière
mue larvaire, car on trouve à l’intérieur de ce puparium ou de cette
peau endurcie une larve qui diffère de celle du stade précédent par là
présence d’une spatule dont le puparium n'offre pas trace, et cette larve
peut demeurer en cet état, sans se métamorphoser, pendant un temps
assez long; ce stade a été appelé « hypnodie » par Künckel d'Hercu-
lais, tandis qu'Asa Fitch le désigne du nom de « flax-seed state » et
la larve « dormant larve ». A l’intérieur de ce puparium (Mayetiola) ou
en dehors de lui (Thurauia), la larve se forme plus tard selon le second
mode un cocon composé de fils. Selon M. Marchal ({. c., p. 22-23),
Contarinia tritici se transformerait «dans une case pupale formée uni-
quement par l’avant-dernière mue larvaire ». D’après mes observa-
tions, l’insecte en question se métamorphose d’après le second mode,
dans un cocon blanc, qui ne résulte nullement d’une-mue larvaire. Ce
qui peut induire en erreur, c’est que l’on trouve fréquemment dans
les épis du Blé et du Seigle, après la sortie des larves de Cécidomyies,
des individus appartenant à la même espèce, mais demeurant dans les
épillets et semblant s’y métamorphoser dans un puparium qui est
en effet le résultat de la dernière mue; mais de pareils pupes ne don-
neront jamais autre chose que des parasites. Jai constaté ce fait sur
une foule d'espèces différentes. Nous y reviendrons en parlant des pa-
rasites des Cécidomyies.

2° Mode. La larve re se rétracte pas à l’intérieur de sa peau endurcie,
mais elle se contente de former autour d’elle un cocon soit par filage,

>

280 J.-J. KiEFFER. (100)

soit par une sécrétion de la peau ou des papilles dorsales ou des
glandes salivaires.

Si nous comparons le mode de nymphose des Cécidomyies avec celui
des autres Diptères, nous arrivons au résultat suivant. Brauer et Schi-
ner divisent les Diptères d’après leur mode de nymphose, en Orthorha-
phes et en Cyclorhaphes. La 4e division comprend les espèces dont la
nymphe est libre ou bien cachée dans une enveloppe formée par l’in-
duration de Ja peau larvaire et qui, au moment de l’éclosion, se fend
lon gitudinalement ou en forme de T sur sa partie dorsale. La 2° com-
prend les Muscides et les Syrphides, c’est-à-dire les espèces dont la
nymphe est renfermée dans un puparium formé par l’induration de la
peau larvaire, qu'elle ouvre à l'un des pôles, au moment de léclosion.
Presque toutes les Cécidomyies rentrent dans la première division; le
genre Mayetiola forme la transition vers la seconde.

4% Lieu, époque, durée et conditions de la nymphose.

J. LIEU DE LA NYMPHOSE. — Beaucoup de larves se métamorphosent
dans la cécidie ou à l'endroit où elles ont trouvé leur nourriture, par
exemple toutes les espèces des genres Clinorhyncha H. Lw., Asphon-
dylia H. LW., Hormomyia H. Lw. et Rhabdophaga W. Cependant le
plus grand nombre quittent leur berceau et se réfugient en terre ou
sous les feuilles ou entre les folioles des mousses pour y subir leur
métamorphose, tels sont, entre autres, tous les représentants du genre
Contarinia Rond., c’est-à-dire une centaine d'espèces. D’autres se mé-
tamorphosent aussi bien dans la cécidie qu’en terre; tel est le cas
pour Contarinia rumicis H. Lw. et Cont. acetosae Kieff.; pendant
que les insectes parfaits éclosent et sortent des fleurs de Rumezr, on
voit sortir en même temps des mêmes fleurs des larves appartenant à
la même espèce, mais qui se rendent en terre pour y subir leur méta-
morphose. Pour Rhopalomyia foliorum H. Lw., Pinsecte se transforme
dans la cécidie pendant l'été et l'automne, et l’on voit plusieurs généra-
lions se succéder ; mais, au mois d'octobre, les larves cessent de se mé-
lamorphoser dans la cécidie, elles se rendent en terre pour y hiverner
el s'y changer en nymphe au printemps suivant. Il n’est pas rare de
voir des larves d'espèces qui se transforment toujours dans la cécidie,
quitter celle-ci pour se rendre en terre, quand cette cécidie a été déta-
chée ou Qu'elle s’est desséchée. Enfin des espèces qui se métamorpho-
sent toujours dans la galle peuvent parfois, mais exceptionnellement,
arriver à la métamorphose, quand on les met sur de la terre humide
ou dans nn endroit humide. J'ai même observé le fait suivant, publié

(101) Cécidomyides d'Europe et d’Algerte. 281

en 189% [289] : « Une larve de Wikiola fagi Hart., extraite de la cécidie
en octobre, avait été mise dans un verre rempli d’eau, et s’y était
laissé tomber jusqu’au fond. Le lendemain je voulus l'en sortir pour
Pexaminer, mais je fus fortétonné de trouver non plus une larve, mais
une nymphe blanche et vivante. Je la remis dans l’eau, où les jours
suivants, Sa couleur passa insensiblement du blane au rouge ».

I. DURÉE DE LA NYMPHOSE. — Chez Miastor metraloas Mein. la du-
rée de l’état nymphal estextrêmement courte; N. Wagner dit à deux
reprises que cet insecte n’est demeuré à l’état nymphal que jusqu’au
3e ou 4° jour [7914, p. 107 et 113]. En dehors de ce cas, la durée de
l'état nymphal est ordinairement de dix à vingt jours. Cette règle n’est
cependant pas sans exception. En effet, comme nous venons de le
voir, la larve de Mikiola fagi Hart. se transforme en nymphe au plus
tard en octobre, et l'insecte ailé n'apparait qu'en mars de l’année sui-
vante; Büsgen à même remarqué que, pour cette espèce, la durée de
la nymphose est variable, et qu’on trouve déjà, à la fin de juillet, une
nymphe dans certaines galles, tandis que d’autres renferment encore
une larve assez petite [57, p. 16]. Asphondylia thymi Kieff., echii H.
Lw. et Hornigi Wachtl demeurent à l’état nymphal depuis le mois de
septembre jusqu’en juillet de l’année suivante. Je sais qu'ici je suis en
contradiction, comme du reste en beaucoup d’autres points, avec
M. Rübsaamen, qui écrit : « Le mode d’hibernation d’Asphondylia
Hornigi n’est pas encore connu; cette espèce abandonne les cécidies
en automne, par conséquent en une saison où une nouvelle produc-
tion de galles n’est guère possible. On ignore si l’insecte hiverne à
l'état d’imago, ou s’il dépose ses œufs en automne sur Origanum ou
sur d’autres plantes » [642, p. 540]. M. Rübsaamen a ignoré que
Wachtl, en décrivant cette espèce, dit formellement : « Les Origanum
lurent recueillis en automne... L'insecte ailé fait son apparition au
printemps suivant » [777, p. 535]. Sans doute que Wachtl a conservé
les plantes dans une chambre chauffée en hiver; mes observations ont
été faites sur des cécidies conservées en chambre froide, où les condi-
tions étaient à peu près les mêmes qu’à l'air libre, et recueillies par
moi-même, à la fin du mois de septembre, à Cœuvres, non loin de
Soissons.

IL. ÉPOQUE DE LA NYMPHOsE. — Les espèces qui n’ont qu'une généra-
tion par an, ou encore la dernière génération des espèces qui ont plu-
sieurs générations par an, demeurent à l’état larvaire et sans prendre
de nourriture jusqu’au printemps ou l'été suivant. Certaines espèces.
et peut-être toutes, sont même capables de demeurer en terre jusqu'à la

282 3. Kierrer. (402)

3° et mème la 4° année, avant de se métamorphoser, fait non encore
signalé jusqu'ici et qui doit être pris en considération quand il s’agit
d'insectes nuisibles, tels que Contarinia trilici et pirivora (1). Voici
comment je l'ai constaté. Quand j'avais mis des larves dans un vase
rempli de terre, j'attendais jusqu'au printemps ou l’été suivant pour
obtenir l'imago ; une fois ce délai passé, et que je n'avais rien obtenu,
je supposais que les larves avaient péri et je vidais le récipient pour y re-
mettre de la terre fraiche et Putiliser de nouveau. Or une année, comme
je voulais obtenir l'éclosion de Putoniella marsupialis Fr. Lw., j'avais
vainement attendu jusqu'au mois de mai, c’est-à-dire jusqu’à l’époque
de l'apparition de leurs galles. N’espérant plus en obtenir les insectes
ailés, je mis de côté, par exception, le vase avec la terre qu’il conte-
nait et je le laissai ainsi jusqu’au printemps suivant, c’est-à-dire de
la troisième année. A cette époque, il m'arriva un jour, après avoir
versé de l’eau sur la terre de tous les pots à éelosion, de vider le reste
du liquide sur le récipient contenant les Putoniella, que je n'avais plus
humecté depuis l’année précédente. À mon grand étonnement, je vis
bientôt sortir de la terre ainsi inondée, de nombreuses larves rouges
qui rampeérent dans toutes les directions et dont plusieurs sortirent
même du vase. L'examen me fit voir que c’étaient bien des larves de
Putoniella, el quinze jours plus tard, done au printemps de la troisième
année, j'obtins en grand nombre linsecte ailé, Ces larves avaient-elles
passé tout ce temps sans cocon? C’est ce que je n'ai pu constater. Je
sais seulement que bien des larves, par exemple celles de Xylodiplosis
praecox Winn., font leur cocon plusieurs mois après qu’elles se sont
réfugiées en terre. Une observation analogue eut lieu pour Clinodi-
plosis galliperda Fr. Lw. Un grand bocal en verre, renfermant de la
terre Gans sa moitié inférieure, fut rempli de feuilles de Chêne avec
les galles abritant les larves des Cécidomyies. Une partie des larves se
rendit en terre, dès septembre; quelques-unes d’entre elles se fixèrent
contre la paroi du verre, en s’y formant une petite excavation dans la
terre, de sorte qu'il me fut facile de les observer. Le cocon ne com-
mença à se former autour de ces larves qu'en décembre, et la nym-
phose eut lieu en mars. Pendant tout cet intervalle, jusqu'au mois de
mars, on pouvait encore trouver, sous les galles de Neuroterus, des

(1) Quant à Mayeliola destructor Say, qui se mélamorphose dans la céci-
die, sur le chaume, B. Wagner [786] et Enock [108] ont déjà observé que si
les chaumes sont exposés à la sécheresse, la métamorphose pouvait être re-
tardée de un ou de deux ans. « Ces retards de un an et surtout de deux ans
ne doivent jamais avoir lieu dans les champs », écrit M. Marchal [446, p. 391.

(103) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 283

larves de Cécidomyies sans cocon, bien conservées et pénétrant en
terre dès qu'on détachait la galle de la feuille.

Mais revenons à notre précédente observation. L'exemple des Puto-
niella ne devait pas être unique. Je conservai pendant plusieurs années
des vases contenant des larves de Cécidomyies et je fis encore les ob-
servations suivantes (en chambre non chauffée). De nombreuses larves
de Contarinia rumicis H, Lw. furent mises en terre en juillet 4897 ;
les insectes ailés firent leur apparition en juin 1898, en juin 1899 et
en grand nombre en juin 1900. J’eus le même résultat pour Clinorhyn-
cha leucanthemi Kieff.; l'insecte fit son apparition pendant trois années
consécutives, et toujours à l’époque dela floraison de sa plante nourri-
cière. Contarinia tritici Kirb., pisi Winn., et acetosae Kielf. parurent
pendant deux années consécutives. Choristoneura sarothamni KiefT.
fit son apparition en partie en juillet de la 4'° année, en partie en mai et
en juin et juillet de la seconde année, et j'espère en obtenir encore la
troisième année. Il est à remarquer que dans tous ces cas, les larves
n'étaient pas exposées à la sécheresse, mais la terre dans laquelle elles
se trouvaient était toujours maintenue humide.

IV. CONDITIONS DE LA NYMPHOSE. — Pour qu'une larve puisse se
changer en nymphe, il faut évidemment qu'elle soit arrivée à sa ma-
turité, c’est-à-dire qu'elle ait achevé de se développer et de se nourrir.
Peut-être faut-il encore ajouter qu’elle ne doit pas être parasitée. Jai
bien observé à plusieurs reprises une nymphe morte ou des débris de
nymphe à côté d’un parasite dans une même galle, mais j'ignore si ce
dernier, en sortant de l'œuf, s’est trouvé déjà en face d’une nymphe
ou bien d'une larve prête à se métamorphoser.

Il est encore requis qu'une période de repos, qui varie suivant les
espèces, se soit écoulée ; nous venons d'en parler en traitant de l’épo-
que de la nymphose. En conservant les larves dans une chambre
chauffée, on peut abréger cette période de repos et obtenir, dès janvier
ou février, des insectes ailés qui, sans cette circonstance, n'auraient
fait leur apparition que quelques mois plus tard.

Mais la principale condition pour la nymphose, c’est que la larve
doit se trouver dans un milieu humide. L'expérience suivante, due à
M. P. Marchal, le prouve pleinement : « Le 19 juillet, je pris 26 pupa-
riums de quatrième génération sur un même rejet vert et je les divisai
en deux lots égaux de 13 chacun. Chaque lot fut mis sur du sable
dans un pot à fleurs. L'un des pots fut placé sur un plat creux qui, à
partir de ce moment, fut toujours rempli d’eau. L'autre pot fut au
contraire maintenu au sec; le soir seulement, de temps à autre, le

284 J.-F. KiEFFER. (40%)

sable était très superficiellement humecté avec un pulvérisateur pour
empêcher une sécheresse absolue, Dans le pot humide les éclosions
eurent lieu au nombre de onze, du 4ef au 10 août; au contraire, dans
l'autre pot il n'y avait encore à celte époque aucune éclosion. Ce pot
fut ainsi maintenu depuis le 19 juillet jusqu’au 1% septembre à la
sécheresse, et, à partir de cette date, plongé dans une assiette remplie
d’eau. Du 1e au % octobre, je constatai 6 éclosions ; 5 avortèrent; 2
avaient été sacriliées pour être examinés » [446, p. 40]. Le même auteur
a essayé d'en trouver le motif : « Pour que le stade de pronymphe
prenne naissance, l'hamidité est absolument nécessaire : l'animal ne
se nourrissant pas, la turgescence de la larve ne peut vraisemblable-
ment se produire que par un phénomène d’endosmose » (1. r., p. 27).

Pour bien des espèces, par exemple pour Oligotrophus taxi Inch.,
juniperinus D. G., Panteli Kieff., Monarthropalpus buxi Lab., etc. il
est même nécessaire que la nymphe, une fois formée, continue encore
à être préservée de la sécheresse, sinon elle périt. C'est ainsi que De
Geer écrivait déjà au sujet d'O. juniperinus : « Bien que la nymphe
soit incapable de se nourrir, il faut cependant, si elle doit demeurer en
vie, qu'elle puisse être imprégnée de l'humidité que dégage la galle.
Toutes celles que j'ai sorties de leurs galles, et mises à un endroit sec,
ont péri, et il m'a fallu, pour chtenir l’insecte parfait, mettre un ra-
meau avec les galles dans un vase d’eau » [96, p. 154]. Laboulbène
écrit de même au sujet de Mon. buxi Lab. : « Au commencement de
mai, M. Fallou vit éclore les insectes parfaits, tandis que les feuilles
minées placées chez moi n'avaient rien produit. La raison en était que
javais simplement déposé les plantes dans des boîtes de carton ou
dans des bocaux de verre, tandis que M. Fallou avait placé les rameaux
dans une petite bouteille pleine d’eau souvent renouvelée. L'humidité
étant indispensable au Buis pour conserver sa fraicheur, les nymphes
étaient mortes chez moi pendant deux années sans pouvoir sortir de
leur loge préparée à l'avance » [344, p. 314].

>» Mouvements de la nymphe.

Les nymphes des Cécidomyines sont paresseuses et peuvent à peine
se déplacer, si ce n’est au moment de l’éclosion. Il n’est pas rare alors
de voir une nymphe, même après sa sortie de terre, Continuer à se
hisser le long des parois d’un bocal en verre.

Celles des Lestrémines sont au contraire remarquables par leur agi-
lité; elles se déplacent avec facilité, même sur une lame de verre,
soit en se roulant sur elles-mêmes, soit en rampant; à cette fin, la

(105) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 285

larve se renverse sur le dos, retire les derniers segments, puis s’ap-
puyant fortement sur les épines dont ceux-ci sont armés, elle pousse
en avant la moitié antéricure de son corps et réussit ainsi à se déplacer
assez rapidement. Cette manœuvre lui est d’un grand secours quand
elle veut chercher un emplacement plus favorable mais surtout pour
le moment de l’éclosion; elle peut ainsi s’avancer entre les fibres du
bois ou de l'écorce, jusqu'à ce que sa partie antérieure arrive à être
cntièrement dégagée.

III. — Caractères généraux de la larve.

Les larves des Cécidomyies se reconnaissent aux caractères sui-
vants : Corps compose de 14 segments, péripneustique, avec neuf paires
de stigmates réparties sur les segments 3 et 6 à 13. Têle non où incom-
plètement différenciée, munie de deux palpes ou antennes bi-articulées,
sans yeux et sans mandibules. Segment 3° ordinairement pourvu d’une
spatule en dessous et d’une double tache oculaire sur le dessus.

Étudions successivement la morphologie, l'anatomie, la physiologie
et la biologie des larves des Cécidomyies.

4 Morphologie externe de la larve adulte.

L'étude de la morphologie externe des larves n'étant possible que
sur une peau larvaire bien transparente, j’indiquerai d'abord la facon
de préparer le sujet qui doit servir à l’étude. S'agit-il d'une larve
vivante ou fraiche, on la pose sur la lame porte-objet, puis au moyen
d’une épingle, on lui fait une entaille sur le côté, vers le milieu du
corps; par l'ouverture ainsi formée, on extraira toutes les parties qui
composent le corps de la larve, de sorte qu'il n’en restera plus que là
peau. On arrivera facilement à ce résultat en comprimant doucement
la larve, avec le côté de l’épingle, qu'on fait passer d’une extrémité
du corps à l'autre ; en ajoutant de temps à autre une gouttelette d’eau,
les parties extraites sont entrainées par le liquide. Si l’on n’a pas en-
core obtenu la transparence nécessaire, on pourra ajouter une gout-
telette de solution de potasse, qui donnera à la peau une transparence
complète. Toute cette opération est l'affaire d’une ou de deux minutes.
S'il s’agit de larves desséchées ou de larves conservées dans de l'alcool,
on les ramollit d’abord dans une goutte d'eau, puis on agit comme
précédemment.

Examinons maintenant : A, la forme et la couleur des larves, B. la

» La 4 / Li
280 J.-J. KiEFFER. (106)
segmentation de leur corps, C. la tache oculaire, D. la spatule sternale,
E. le revêtement cutané et les papilles, enfin F. les stigmates.

A. Forme et couleur des larves.

A l'état adulte, les larves ont une forme généralement allongée, c’est-
à-dire plusieurs fois aussi longue que large, et variant d'ordinaire de
Là 3 mill. La plus grande espèce que je connais, Hormomyia sp., qui
forme des galles sur Carex Davalliana, mesure 7 mill. en longueur,
sur 2 en largeur; celle d’'Hormomyia cornifex Kieff., mesure 5 mill. sur
1,75; celle de Rhabdophaga Pierrei Kieff..3 sur 1: R. Karschi Kieff.,
2,75 sur 0,75; R. dubia Kieff., 2,75 sur 1; R. rosaria H. Lw., 2,50 à
3 sur 4.50 à 2: R.clavifex Kieff. et pulvini Kieff., 1,50 à 2 sur 0,80 à 1.
D’autres offrent une forme encore plus ramassée que ces dernières, par
exemple celle de Clinorhyncha tanaceti Kielf., qui mesure 1,25 en lon-
gueur et 0,75 en largeur. Leur corps est ordinairement un peu com-
primé; chez quelques espèces, par exemple chez Rhizomyia Kiefr.
(Coccomorpha Rbs.), il est aplati et cocciforme ; beaucoup d’autres es-
pèces ont au contraire le corps à peu près cylindrique, ce qui est le
cas pour les Contarinia, les Camptomyia, les Winnertzia, ete.

La couleur de ces larves est blanche, citrine, vitelline, orangée,
rouge vil, rarement brune. Une larve peut être blanche à l’état jeune
et devenir rouge plus tard, par exemple Oligotrophus capreae. Parois
une larve est blanche jusqu’à sa maturité, c’est-à-dire quand elle cesse
de prendre de la nourriture, et devient rouge pendant sa période de
repos, par exemple Rhabd. nervorum Kieff. D’autres fois des larves de
la même espèce et provenant des mêmes galles peuvent présenter, les
unes une couleur blanche, les autres une couleur jaune pâle: j'ai
d’abord cru qu'il s'agissait là d’une différence de sexe, mais l’obser-
vation m'a prouvé que je faisais erreur. La couleur peut même changer
rapidement sur les mêmes individus; il est arrivé que des larves
blanches, sorties régulièrement de leurs galles et mises provisoire-
ment dans une boîte en fer-blanc, parurent jaunes le lendemain.

Ganin fait une remarque semblable pour les larves d'Hétéropézines
qu'il a décrites; celles qui étaient en liberté paraissaient blanches:
celles qui s'étaient réfugiées dans le bois pourri, d’un jaune sale;
enfin celles qui avaient pénétré dans du carton offraient une couleur
orangée [202].

Celte coloration est indépendante de celle de l’œuf et de l’imago; la
larve de Winnertzia rubra Kielf. est orangée, tandis que l'œuf est
blanc: celle de Perrisia piri B.est blanche, tandis que l'œuf et limago

(107) Cecidomyides d'Europe et d'Algérie. 287

sont rouges. Elle n’a pas son siège dans la peau larvaire qui est tou-
jours hyaline et transparente, mais dans le tissu adipeux. On voit
souvent par transparence une ligne longitudinale et médiane, jaune
ou verte, qui correspond au tube digestif lequel est rempli d’un suc
de cette couleur.

B. Segmentation de la larve.

Le corps des larves de Cécidomyies se compose de quatorze seg-
ments (!)}, dont le premier représente la tête, le second le cou, les trois
suivants le thorax, les neuf autres l'abdomen; le dernier segment
abdominal porte le nom. de segment anal. Certains auteurs, comme
Dufour en 1845 [103], Mik, en 1883 [490] ne comptent que treize seg-
ments; pour eux, la tête et le cou ne forment qu’un seul segment, de
sorte que le prothorax formerait le second segment et non le troisième.
Cette manière de voir a l'avantage de faire rentrer les larves des Céci-
domyies dans le cadre des autres Diptères, chez lesquels le protho-
rax forme le second segment.

Il peut arriver,mais rarement, que l’on pourra être dans le doute au
sujet du segment anal, à savoir chez Cecidomyia pini D. G., C.resinicola
0. S. et chez Dicerura Kieff. (lridomyza Rbs.). Pour les deux premières
larves, quand on les considère de dessus, on serait tenté de ne compter
que sept segments abdominaux, outre le segment anal. Ratzeburg
écrivait déjà de la première de ces espèces, que l’on pourrait être dans
le doute au sujet du segment anal; et de fait, il s’est trompé. On peut
se rendre facilement compte qu'ici encore l'abdomen se compose de
huit segments outre le segment anal; en effet, sur le dessous on dis-
üingue nettement huit rangées de papilles ventrales correspondant
donc aux huit segments abdominaux, sans y compter le segment anal;
en outre les séries de verrues spiniformes mènent au même résultat.
I! n’est donc pas possible de compter moins de segments abdominaux
chez ces deux larves que chez les autres, quand on les examine de des-
sous. Quant au dessus, il suffit d'admettre que le huitième segment
abdominal se prolonge jusqu’à l'extrémité du segment anal, où il se
divise en deux lobes, dans lesquels viennent aboutir les deux derniers
stigmates; le segment anal ne serait donc visible qu’en dessous et
sur les côtés. Ce qui prouve que cette explication est réellement Ja
seule vraie, et que c’est une erreur de considérer ces lobes comme
appartenant au segment anal, ainsi que l'ont fait Ratzeburg et tout

(1) J'entends donc par segments somatiques, les quatorze segments dont se
compose la larve; la tête est le premier segment.

288 1.1. Kierrer. (408)

récemment encore Rübsaamen en 1894 et en 1899 [626, p. 387 ; 642], c'est
que 1° l’on voit de chaque côté des lobes à stigmates, et au-dessous
d'eux, un des deux lobes du vrai segment anal; 2° la disposition des
papilles sétigères dorsales sur les deux lobes supérieurs est exactement
celle qui est particulière au 8° segment abdominal, et nullement celle
d'un segment anal, comme nous le verrons plus loin en parlant des
papilles; enfin 3° les lobes inférieurs, renflés en pelote, portent eux-
mêmes les papilles sétigères terminales, qui sont caractéristiques pour
le segment anal: ils servent en outre seuls à la locomotion, tandis que
les lobes supérieurs n’y prennent point part (pl. 30, fig. 4-5). Que l’on
s'imagine ces deux lobes à stigmates prolongés encore davantage et
dépassant de beaucoup le segment anal, et l’on aura la forme que
présentent les Dicerura (pl. 25, fig. 40).

La tête est ordinairement faiblement chitineuse et jaune, au moins
en partie. Nous ne parlons ici que de sa forme et de ses parties ex-
ternes, nous décrirons les parties internes en traitant de l'anatomie.
La portion antérieure, vue de dessus, est moins élevée et parfois no-
tablement plus rétrécie que la moitié ou le tiers postérieur (pl. 95,
lig. 6-8). L'insecte peut à volonté la retirer en entier dans le second
segment ou même encore avec le second segment dans le troisième, de
sorte que l'extrémité libre de la spatule dépasse, en avant, la ligne trans-
versale formant la limite antérieure du corps. Chez Rhizomyia perplexa
Kielf., la tête de la larve peut demeurer fort longtemps retirée com-
plètement avec le second segment dans le troisième qui est le segment
prothoracique, de sorte qu'étant vu d'en haut, le bord antérieur de ce
troisième segment, avec ses soies dorsales disposées en arc, parait être
l'extrémité antérieure de la larve, ce qui contribue encore à donner à
celle-ci son aspect cocciforme. Je n'ai jamais réussi, malgré des essais
réitérés, à voir la larve vivante autrement qu’en cet état (pl. 95, fig. 4).

De chaque côté de la tête se voit un petit tentacule, ayant la forme
de palpe ou d'antenne. Ces palpes, comme nous les désignons ici, sont
presque toujours bi-articulés; chez quelques Lestrémines on pourrait
les appeler tri-articulés. Leur point d'insertion varie selon les genres:
tantôt on le trouve tout près de l'extrémité antérieure de la tête. tantôt
vers le milieu, tantôt plus rapproché de la base que du sommet.

Leur longueur est également variable ; ordinairement les palpes ne
dépassent pas ou guère l'extrémité antérieure de la tête, leur forme est
cylindrique, le second article est à peine deux fois aussi long que
gros, et hyalin, comme le premier. Chez certaines espèces cependant,
surtout chez Lestodiplosis Kieff., le second article est subulé et parfois
presque sétiforme, jaune ou brun, mobile, dépassant de beaucoup lex-

(109) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 289

trémité antérieure de la tête et quatre à huit fois aussi long que gros.
Une pareille conformation des palpes se retrouve encore chez plusieurs
autres genres de Diplosides et chez quelques Lestrémines et Épidosides.
Dans tous les cas on distingue avec un fort grossissement une ligne
longitudinale, généralement oblique, passant d’un article à l’autre et
s’arrêtant à l'extrémité du dernier article, à une minime papille tactile,
qui est surtout bien distincte chez les Contarinia Rond.

Le segment anal ou neuvième segment abdominal est faiblement
bilobé, rarement profondément bilobé à son extrémité. À sa surface
inférieure apparaît, chez toutes les Cécidomyines, une fente médiane
et longitudinale, limitée par un bourrelet elliptique; elle représente
l'anus; chez les Lestrémines et les Hétéropézines, l'anus est au con-
traire situé à l'extrémité du segment anal, où il forme un tube infundi-
buliforme et rétractile, c’est-à-dire entrant et sortant alternativement
pendant les mouvements de la larve.

C. Tache oculaire de la Larve.

Un des caractères distinctifs des larves des Cécidomyies est la tache
oculaire, qui peut cependant faire défaut, par exemple chez Arthro-
enodax pseudo-gallarum T., selon Targioni-Tozzetti. On appelle ainsi
deux taches de couleur brune, en forme de virgule ou de croissant, à
concavité externe, se touchant par leur côté convexe et interne; elles
sont situées dans la profondeur des tissus sous le 2e ou 3° segment,
mais placées dorsalement par rapport au tube digestif, de sorte qu’elles
sont visibles par transparence sur le dessus de la larve. On l'appelle
tache oculaire, parce qu’on lui attribue la signification d’ocelles, comme
nous le verrons plus loin en traitant de l'anatomie (pl. 5, fig. 6, a; 8, a).

D. Spatule sternale de la Larve.

Un caractère particulier aux larves de Cécidomyies arrivées à leur
maturité (1) et qu'on ne retrouve chez aucun autre insecte, est la pré-

(1) Ganin écrit qu’il a vu sur toutes les larves la spatule tridentée [202].
Faut-il en conclure que toutes ces larves étaient arrivées à maturité? Ou bien
y aurait-il réellement des larves immatures munies d’une spatule? Ce cas se-
rait le seul que l’on connüt jusqu'à présent. Dire que N. Wagner a fait la
même observation est inexacl. Cet auteur a trouvé dans une souche de Sor-
bier trois larves munies d’une spatule, mais plus grandes que celles de Miastor,
auxquelles elles ressemblaient quant au reste; elles ne se sont pas multipliées.
Il est probable qu'il s'agissait ici d’une autre espèce.

Ann. Soc. Ent. Fr., LXIX, 1900, 19

290 À. Kierren. (110)

sence d'un organe chitineux spécial, de forme variable, situé sur la
face ventrale du premier segment thoracique; c’est la spatule sternale
{(spathula sternalis, Mik [490, p. 213]), appelée breast-bone par les An-
glais et Brustbein où Brustgräle par les Allemands. Réaumur en fut
le premier observateur, Dans ses Mémoires [587, p. 17, pl XXXVI,
lig. 5], cet auteur représente la larve de Lasioptera rubi Heeg., vue de
dessous, avec cette explication au sujet de la spatule : « corps brun et
écailleux, se terminant par une fourche », et dans le texte (p. 427), on
lit : « Ce trait brun, bien examiné et tâté avec quelque pointe, est
reconnu pour être d’une substance aussi dure que la corne et l’on
parvient à voir que son bout le plus proche de Ja tête est non seule-
ment plus gros que l’autre, mais qu’il est composé de deux parties
droites, presque parallèles l’une à l’autre et qui ne se touchent pas. Le
bout simple et le plus éloigné de la partie antérieure sort d’une fente
qui est apparemment la bouche dans laquelle entrent les fragments de
libres qui ont été brisés par la partie fourchue ou le sue qu’elle en à
exprimé. C’est sur quoi on ne peut encore que deviner ». Plus loin, la
planche XXX VIII, fig. 16, nous montre la larve de Mikiola fagi Hart.
vue de dessous, avec cette explication au sujet de la spatule : « deux
espèces de tranchants avec lesquels le ver peut agir contre les parois
de la galle ».

I NATURE DE LA SPATULE. — Cet organe est constitué par une lame
plus ou moins chitineuse et rigide; parfois presque hyaline, le plus
souvent jaune où brune, rarement d’un noir profond; elle prend nais-
sance à la base de la partie ventrale du premier segment thoracique,
dans un seul cas, au milieu du second segment thoracique, et s'applique
longitudinalement contre cette face ventrale, dont elle n’atteint jamais
le bord antérieur. Elle émerge à nu, à son extrémité antérieure, mais
dans le reste de son étendue elle est recouverte par une strate cuticu-
laire superficielle, dont on voit l'extrémité sous forme de ligne ou pli
transversal à l'endroit où émerge la partie libre de la spatule. Quand la
larve est vue de profil, on voit distinctement cette partie libre dépas-
ser la ligne du corps. Les auteurs ne s'accordent guère sur la nature
de la spatule. Laissons encore la parole à M. Marchal [446, p. 23] :
« Les coupes longitudinales que j'ai faites de la larve de Cec. destructor,
m'ont montré que la spatule n’est qu’un simple épaississement de la
cuticule, dans l'épaisseur de laquelle elle se trouve toute comprise. La
couche qui voile la spatule sternale à sa base n’est qu’une strate cuticu-
laire superficielle séparée des strates profondes épaissies à ce niveau et
qui constituent la spatule elle-même ; en avant, au niveau de l'extrémité

(411) © Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 291

libre, cette strate superficielle se soude avec le reste de la spatule; la
ligne suivant laquelle se fait cette soudure correspond au repli dont
nous avons parlé. La spatule ne présente ni apophyse interne, ni
muscles spéciaux s’insérant sur sa base; ce sont les mêmes muscles
longitudinaux existant sur tous les segments, qui en s’insérant sur
l'hypoderme au-dessous d'elle, déterminent sa mobilité. On ne peut pas
dire qu'il y ait une partie de la spatule sous-cutanée et l'autre libre,
comme le font tous les auteurs (!), puisque cet organe est tout entier
compris dans l'épaisseur de la cuticule ». L'observation de M. Marchal
est parfaitement exacte; pour s’en convaincre, il sufit de séparer sur
une peau larvaire la partie ventrale de la partie dorsale ; si l’on exa-
mine la première successivement sur ses deux faces, l’on verra que la
spatule est voilée des deux côtés et qu’elle n’est libre qu'à sa partie
antérieure sur la surface externe de la peau. J'ignore pourquoi
M. Rübsaamen s’obstine encore en 1899 [642, p. 533] à écrire que la
spatule « est située sous la peau » et que son extrémité antérieure
« émerge de dessous la peau ».

II. FORME DE LA SPATULE (pl. 28). — De même que l'absence de la
spatule est généralement un caractère générique, comme je l'ai dé-
moutré pour Lestodiplosis Kieff., Rubsaamenia Kieff. et Rhopalomyia
Rbs. (2), de même aussi la forme de la spatule estordinairement carac-
téristique pour les genres et même pour les groupes. Cet organe à ordi-
nairement l'aspect d’une lame plus ou moins longue, étroite dans ses
deux tiers ou ses trois quarts inférieurs, élargie dans sa partie supé-
rieure et généralement diversement incisée à son extrémité. Dans les
genres Camptomyia Kieff. et Winnertzia Rond., la spatule est toujours
simple et obtuse (pl. 32, fig. 4); chez Porricondyla Rond. (Epidosis H.
Lw.), Dicerura Kieff. (Iridomyza Rbs.) et Kiefferia Mik, en fer de lance
(pl. 32, fig. 10); chez la plupart des Cécidomyines, bilobée ; chez Asphon-

(1) Un auteur italien avait pourtant remarqué, avant M. Marchal, que la
spatule n’est pas sous-cutanée ; c’est M. Targioni-Tozetti [704, p. 463]. 11 dé-
finit cet organe : « Organo chitinoso formato in generale da una parte poste-
riore allungata, contenuta in una guaina della epidermide et variamente
terminata nella estremita anteriore libera esternamente, appena protraltile. »

(2) Dans mon travail sur les Larves de Cécidomyies, qui parut en janvier
1895 [290], j'ai indiqué formellement, dans le Synopse des larves du groupe
Asphondylia, p. 8, comme caractère des larves de Rhopalomyia : « Seule-
ment quatre papilles ventrales. Larve dépourvue de spatule. » Cela n’a pas
empêché M. Rübsaamen de donner ce même caractère deux années plus tard
comme une découverte, et d'ajouter cette réflexion qui le caractérise
« M. Kieffer n’a pas connu ce caractère qui est pourtant si frappant! » [639].

292 R-J. KIEFFER. (142)

dylia H. Lw., bilobée et chaque lobe muni d'une dent au côté interne
(pl. 32, fig. 5); chez la plupart des Lestrémines, trilobée (pl. 32, fig. 6);
chez Oligotrophus Bergenstammi Wachtl, quadrilobée (pl. 32, fig. 7);
enfin chez Braueriella phillyreae Fr. Lw. avec des lobes encore
plus nombreux (pl. 32, fig. 8). Ces deux dernières formes étaient
inconnues jusqu'ici. La partie inférieure de la spatule, ou la tige, est
très allongée dans le genre Mycodiplosis Rbs. ; nulle ou très courte dans
le genre Dryomyia Kielf. et chez Æormomyia cornifex Kieff., Rhabd.
rosaria H, Lw., rosariella Kieff., pulvini Kieff., pseudococcus Rbs., Oli-
gotrophus betulae Winn., etc.

La partie évasée ou terminale est à peine plus large que la tige chez
Clinorrhyncha H. Lw., tandis que pour les autres genres elle est généra-
lement fortement évasée. L’extrême base de la spatule est également
dans la plupart des cas un peu élargie; chez certaines espèces à spa-
tule fortement marquée, par exemple chez Rhabd. Pierrei Kieff. et
Karschi Kieff., la base s’élargit en forme d’ancre (pl. 31, fig. 3).

Dans bien des cas l'extrémité de la strate cuticulaire qui voile la
spatule parait chitineuse de chaque côté de celle-ci, mais en dehors
d'elle, ce qui a fait croire à des muscles s’insérant transversalement
à la base de Ja partie qui émerge. Cela peut se présenter aussi sur
d’autres points de la spatule (pl. 32, fig. 9).

Chez Rhabd. Pierrei, la partie élargie de la spatule est traversée
longitudinalement par deux arêtes parallèles, formant une double
crête; en outre, de chaque côté de sa base s'élève un lobe réniforme,
qui forme comme un repli de la spatule et qui n’est pas dans le même
plan qu’elle. Ce lobe est sans doute recouvert par une strate superfi-
cielle de Ja cuticule, car on ne voit pas de solution de continuité de
celle-ci. Nous représentons cette singulière forme vue de face (pl.
31, fig. 1) et de profil (fig. 2).

D'autres fois la spatule est entourée d’un espace cuticulaire large
et cordiforme qui s’est chitinisé lui-même, paraît brun ou jaune et s’é-
tend depuis les papilles pleurales jusque près de la base de la spatule,
où il se rétrécit et cesse; tel est le cas pour Asphondylia verbasci
Vall., punica March., Borzii De St.. echii H Lw. et Stefanii Kieff.
’arlois encore un espace chitineux et brun s'étend plus haut, de cha-
que côté de la spatule, englobant les papilles sternales, tantôt séparé
lun de l'autre, comme chez Asphondylia Hornigi Wachtl, et chez
quelques Lestrémines, tantôt se réunissant au-dessus de la spatule et
ne formant ainsi qu'un espace chitineux unique, par exemple chez les
cinq espèces d’Asphondylia qui viennent d’être cités (pl. 29, fig. 2, d).

(143) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 293

IT. VARIATIONS DE LA SPATULE. — Il est vrai que la spatule est su-
jette à varier sur des larves appartenant à la même espèce, mais cela
n'empêche nullement de l’uliliser comme un élément important dans
la détermination des larves. En effet, tantôt ces variations sont très
faibles et insignifiantes, ne déviant pas sensiblement de la forme habi-
tuelle, tantôt elles se sont formées de telle facon que la spatule n’est
plus symétrique ct l’on se trouve alors devant un cas d’anomalie,
comme il s'en présente aussi chez l’insecte parfait, ou enfin elles se
produisent sur des larves parasitées et malades qui n’ont pu arriver
à leur développement normal. M. Marchal qui a accordé une grande
attention à ces variations de la spatule chez Mayetiola destructor Say,
dit lui-même : « Les plus curieuses variations que j'ai rencontrées sont
celles qui se présentent chez certaines larves attaquées par des Néma-
todes » [446, p. 25].

IL existe encore une autre variation, mais qui n'empêche pas davan-
tage d'utiliser cet organe pour la détermination des espèces, c’est celle
qui est le résultat du développement des larves. En effet, comme nous
le verrons plus loin, quand la larve est parvenue à son dernier stade,
c’est-à-dire à celui qui est caractérisé par la présence de la spatule,
cette dernière n’est pas entièrement formée après la mue qui précède
ce stade, mais sa partie évasée apparait d’abord (!) et elle est souvent
déjà entièrement chitineuse et brune sans qu'il apparaisse encore trace
de la tige; ce n’est que plus tard, et petit à petit, que celle-ci devient
visible. C’est ainsi qu’en recevant de M. le D' Massalongo, en 1890, des
galles de Monarthropalpus buri Lab., contenant des larves prêtes à se
métamorphoser et ayant une spatule à tige brune, j'ai cru d’abord
que Laboulbène avait fait erreur en dessinant une spatule sans tige ;
l'éminent professeur de l’université de Ferrare ayant eu l’obligeance
de m'envoyer l’année suivante, sur ma demande, des galles contenant
des larves plus jeunes, je pus me convaincre de l’exactitude de l'ob-
servation de Laboulbène, mais, en même temps, de la variation à la-
quelle cet organe est régulièrement sujet pendant la croissance de la
larve. J'ai eu depuis cette époque fréquemment l’occasion de constater
le même fait. Chez Rhabdophaga Pierrei, les deux lobes latéraux de la
partie évasée, non situés dans le même plan que le reste de la spa-
tule, se chitinisent d'abord, ce qui a lieu au commencement de sep-
tembre ou à la fin d'août ; la larve est encore relativement petite alors
et sa couleur d'un jaune très clair; les deux lobes pointus qui termi-

(1) Cette partie évasée se forme petit à petit; au commencement elle est
hyaline et passe ensuite insensiblement au jaune ou au brun,

29% SJ. KIEFFER. 11%)

nent la partie évasée se chitinisent ensuite, mais on ne voit pas encore
trace de la tige.

J'ai cru autrefois qu'il existait peut-être encore une variation due à
l'usure [280, p. #1], mais il est résulté de mes observations ultérieures
que les deux spatules en question, dont l'une ne m'était connue que
par un dessin, sont à rapporter à deux insectes différents, vivant tous
deux dans la couche ligneuse du Saule, à savoir Rhabd, saliciperda Duf.
et Pierrei Kiel.

IV. ROLE DE LA SPATULE STERNALE. — Le rôle de la spatule sternale à
été fort discuté par les auteurs et l’on a émis, à son sujet, des opinions
très diverses que nous allons exposer successivement.

{re Opinion. La spatule sternale considérée comme organe de perfora-
tion, Réaumur, le premier observateur de la spatule, fut aussi le pre-
mier qui essaya d'en expliquer l'usage. Comme nous venons de le voir
plus haut, Réaumur, tout en avouant « qu'on ne pouvait encore que
deviner » sur l'usage de cet organe, pensait qu'il servait « à briser les
libres de la galle » ou bien « à en exprimer le suc ». Jai cru également (1)
que la spatule était un organe de perforation, et j’en ai donné les rai-
sons suivantes [290].

4° La spatule est le seul organe qui puisse servir au travail de per-
foration qui incombe à beaucoup de larves. En effet, « comme la plu-
part des galles (dans lesquelles à lieu la transformation de l’insecte) ne
sont pas des pseudo-carpes déhiscents, mais bien indéhiscents, c’est-à-
dire, ne s'ouvrant pas à la maturité, que deviendrait le frêle Diptère se
trouvant, au moment de son éclosion, captif dans une prison dont il
ne pourrait briser les parois? Que deviendraitl, si la nature n'était
venue à son aide auparavant et voici comment. Avant de faire la morte
pour se mélamorphoser, la larve se met à entamer la paroi de sa pri-
son et y pratique une sortie, en laissant comme séparation d'avec le
dehors, ou, si l’on veut, comme porte, afin d'empêcher tout étranger
de pénétrer chez elle pendant son sommeil, une mince pellicule cireu-
laire, un peu transparente, laquelle sera brisée plus tard, au moment
de léclosion, par la double armure céphalique de la nymphe ; ou bien
encore, comme je l'ai constaté pour celle de Rhopalomyia syngenesiae
H. Locw., elle pratiquera au sommet de la galle une entaille circu-

(1) Mes observations ultérieures m'ont permis de trouver dans les parties
buccales de Ja larve un double organe que je considère comme un veslige
des crochets des larves de Muscides, et qui serait alors à considérer comme
organe de pertoration, mais je n’en ai pas la certitude (pl. 26, fig. 5, m).

(15) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 295

laire, de sorte qu’au moment de l’éclosion la nymphe n'aura plus qu'à
pousser contre le sommet de sa prison et celui-ci se détachera aisément
en forme de calotte.. Dans bien des cas cette opération doit être une
rude besogne pour la larve.

« Qu'on songe, par exemple, aux R. salicis D. G., saliciperda Duf. et
medullaris Kieff.! Quels efforts ne faut-il pas à ces vermisseaux pour
traverser la couche ligneuse d’une branche ou d'un rameau de Saule
et arriver jusqu'à l’épiderme de l'écorce! Or les parties buccales de
l'animal ne sont aptes qu’à pomper des liquides, mais nullement à en-
tamer un corps solide ; la spatule seule peut donc donner l'explication
du travail opéré.

« Afin que l’on en soit persuadé, j'envoie à la Société, avec cette note
un rameau de Saule habité par R. saliciperda Duf. avec prière de
vouloir bien l’examiner. On y trouvera, dans de petits conduits encore
inachevés, la larve couchée sur le dos; autour d'elle, on remarque un
amas grisàtre qui, examiné au microscope; se montre composé d’une
multitude de fibres détachées par la larve; j'ai même vu une larve
ayant de ces fibres dans l'angle formé par l'extrémité de la spatule
avec le segment prothoracique, comme c’est le cas pour un rabot
avec lequel on à passé sur une planche » (p. 39-40). Quant à d’autres
espèces dont la galle n’est pas close ou devient déhiscente à la matu-
rité, et qui sont néanmoins pourvues d’une spatule, il faut remarquer
que cette spatule est faiblement chitineuse et que son rôle perforateur
n’est pas encore exclu, vu qu'il reste encore un cocon à perlorer. Les
larves de Rhopalomyia, dont la plupart vivent dans des galles non en-
ièrement closes ou déhiscentes à la maturité, ainsi que celles des Les-
lodiplosis qui sont zoophages, se métamorphosent sans cocon (1); or
elles n’ont point de spatule. Celles de Bremia, également zoophages,
se métamorphosent dans un cocon et elles ont une spatule. On peut
donc présumer que la spatule sert à prélormer une ouverture dans
ce cocon. Laissons ici la parole à Perris. Dans son Mémoire sur les
Insectes du Pin maritime, 1870, p. 168, cet auteur dit du cocon de
Cecidomyia pini : « La régularité de forme et de dimension de la calotte
qui se soulève à l'extrémité antérieure de la coque résineuse, pour
livrer passage à l’Insecte parfait, me donne la conviction qu'avant de
filer son cocon soyeux, la larve prépare les voies en faisant une en-
taille circulaire dans l'épaisseur de la couche résineuse, au point de
détacher presque complètement cette calotte que soulève le moindre
effort ».

(1) Cela n'est pas le cas pour tous les Leslodiplosis.

206 JXJ. KIEFFER. (16)

9 En règle générale la spatule est le plus fortement développée chez
les espèces qui ont des tissus à perforer, et elle fait défaut ou elle est
faiblement marquée chez celles qui n’ont rien à perforer. C’est ainsi
qu'elle est fortement chitineuse et entièrement d’un brun sombre, chez
les espèces vivant dans une galle close et dure, par exemple chez les
larves de Clinorrhyncha, la plupart des Lasioptera, celles de Baldratia,
de Choristoneura, d'Asphondylia, de Rhabd. salicis D. G., saliciperda
Dui., Pierrei KiefT., etc.

3° La spatule n'apparait qu'à la dernière forme larvaire, c’est-à-dire
au moment où la larve commence son travail de perforation.

Cette opinion a encore été partagée par les auteurs suivants :

Nic. Wagner, professeur à Kasan, en 1863 [790, p. 515-516]; la spa-
tule de Miastor metraloas Mein.? est appelée appareil de perforation
servant à la larve à entailler le bois pourri, pour s’y former un passage.

Laboulbène, en 1873 [344, pl. IX, fig. 5]; la spatule de Monarthro-
palpus buxi Lab. est désignée sous le nom d’organe thoracique ser-
vant à décoller, à la manière d’un coin, les parties supérieure et infé-
rieure des feuilles du Buis.

Mik, en 1883 [490, p. 40-41]; l'auteur indique en cet endroit qu'il a
eu occasion de se convaincre du rôle perforateur de la spatule,

Ormerod, en 1866 [548, p. 10]; l’auteur dit de la spatule de Maye-
tiola destructor Say : « From my own observations I conjecture that
it is used as a digger or scraper, and it may be that the reason why
strong-stemmed wheat, or stems containing more silica, are not so
much injured by attack as other kinds, is, that the fork is not strong
enough in these instances to assist the excessively delicate mouth-parts
Lo acquire their food from ihem ».

Lindemann, en 1887, dit de même dans sa description de cette larve,
que la spatule sternale « sert d'appareil perforateur pour creuser la
tige du blé » [369].

Valéry Mayet, en 41890 [468] dit de la spatule de la Cécydomyie de la
vigne : « C’est évidemment là l'instrument perforant qui permet à
cette larve à bouche inerme de déchirer les tissus ».

2° Opinion. La spatule considérée comme organe de locomotion ou
comme point d'appui. Cette opinion a été émise d’abord par M. le baron
von Osten-Sacken, dans sa Monographie des Diptères de l'Amérique du
Nord [554, p. 182] : « It may be that this organ is used for locomotion,
although TI hardly would consider it as homologous to the pseudopods

.,

of the Jarvae of Chironomus and Ceratopogon ». Favoue que j'ai au

(147) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie, 297

contraire trouvé une grande analogie entre la spatule des larves de Cé-
cidomyies et le pseudopode des larves d’un Chironomide que j'ai décrit
sous le nom de Wulpiella scirpi; chez cette dernière, le pseudopode,
qui est unique, offre l'aspect d’un lobe rétractile, appliqué à la facc
venirale du segment prothoracique, et est en grande partie voilé par
la peau ou par une strate de la peau, l'extrémité seule émergeant à nu.
Il y a encore une certaine analogie entre la spatule et l’organe de lo-
comotion qu’on voit sur la face ventrale du second segment ou seg-
ment prothoracique des larves des Simulides ; ce dernier est entiè-
rement libre et n’est fixé à la peau que par sa base; mais sa forme est
celle d’un tube en cône tronqué. Cette analogie est également un ar-
gument pour l'opinion de ceux qui, comme J. Mik, considèrent le
segment prothoracique des larves de Cécidomyies comme étant le 2 et
non le 3° segment du corps.

Selon Ganin,en 1865 [202], la spatule servirait de point d'appui pour
rentrer le premier segment dans le second, ou, selon Perris, en 1871
(576, p. 172], « pour soutenir les muscles qui mettent en mouvement
les mandibules, la tête et le segment supplémentaire ». Selon M. Giard,
en 1894, elle serait « un organe locomoteur lorsque les larves cher-
chent dans le sol un endroit pour se transiormer en nymphe », ou elle
servirait à la larve de point d'appui pour se mouvoir dans la galle
(174, p. 341], ou pour se courber en arc et s'élancer ensuite [174, p. 83].
Selon Enock, en 1891 [108, p. 335] et, selon Marchal, en 1897, la spa-
tule servirait à la larve de Mayetiola destructor Say pour se retourner
dans le cocon au moment de la métamorphose. Voici comment s’ex-
prime ce dernier : « Dans le cas qui nous occupe, la spatule à un rôle
très spécial que Enock a été seul jusqu'ici à reconnaitre. Il est d’abord
manifeste que chez C. destructor la spatule sternale ne peut servir
d’organe de locomotion puisqu'elle n'apparaît qu'après la formation du
puparium. Elle ne peut non plus servir à la larve pour entamer le pu-
parium et pour préparer ainsi la sortie de la nymphe, les pupariums
qui renferment les nymphes sont intacts, et de plus la nymphe pos-
sède sur le vertex un rostre chitineux dont elle se sert pour briser
le puparium. Le rôle réel de la spatule s'explique par ce qui suit :
d’après ce que nous avons vu, la larve est toujours fixée sur le chaume.
la tête en bas; or l’insecte adulte revêtu de la peau nymphale, qui
sort du puparium, sort toujours, tête première, par l'extrémité su-
périeure de ce dernier. Comment expliquer ce renversement dans
les positions respectives de la larve et de l’imago? Enock a résolu
par l'observation ce point intéressant de la biologie de l’insecte. IL à
constaté que, quelque temps après que Ja larve affectant la 3° forme

298 JU. Kierren. :148)

larvaire s’est rétractée dans sa case pupale, elle se retourne à son in-
térieur de facon à mettre sa lête dans l'enveloppe cuticulaire qui tout
à l'heure enveloppait son extrémité postérieure et réciproquement.
Pour opérer cette remarquable évolution, la larve se sert de sa spa-
tule sternale qu’elle utilise comme un levier en l’appuyant contre les
parois de la case pupale ; aussi Énock pense-t-il que cet organe n’a
d'autre fonction, chez C. destructor, que de permettre à la larve de se
retourner dans sa case pupale. Je ne puis que me ranger à son opi-
nion, car les observations que j'ai faites confirment entièrement celles
de cet auteur » [446, p. 24].

3 Opinion. La spatule considérée comme organe de filage. . Mik écri-
vait en 1883 [490, p. 40] : « Il n’est pas impossible que la spatule ster-
nale, outre sa fonction de perforation, ne serve encore à la fabrication
du cocon ». Et un peu plus tard, en 1891 [506, p. 4], le même auteur
ajoutait : « Je suis à même d'ajouter aujourd'hui que là larve se sert
en réalité de sa spatule quand elle se fabrique le cocon dans lequel elle
doit se métamorphoser ».

4 Opinion. La spatule considéree comme organe buccal. Cette opi-
nion, qui est évidemment erronée, fut celle de Dufour, 1845 [103,
p. 215-222]; la spatule y est considérée comme un « vestige des mandi-
bules »; de Héeger, en 1856 [218, p. 336], la spatule est désignée
comme « partie buccale brune et cornée » ; de Laboulbène, en 1857 [343,
p. 569], la spatule est nommée « pièce cornée annexée au tube digestif » ;
de Giraud, en 1861 [182], la spatule de Lasioptera eryngii Vall., Ar-
noldia cerris Koll. et Dryomyia circinnans Gir. est décrite comme « ar-
mure buccale située en arrière de la bouche » ; enfin de Lindemann,
en 1887 [3069].

E. Revélement cutané et papilles de la Larve.

Parlons successivement de l’un et des autres.

I. REVÊTEMENT CUTANE. — Beaucoup de larves de Cécidomyies sont
nues, c’est-à-dire sans aucun revêtement cutané (!). Cela est la règle
générale pour Contarinia Rond., Camptomyia Kicff., Winnertzia
Rond., Aprionus Kieff., etc. Chez Winnertzia, la cuticule offre des
stries longitudinales et parallèles, très rapprochées et par suite très
nombreuses ; c’est ainsi que chez une espèce j'en ai compté 280 sur

(1) Abstraction faite des verrues spiniformes qui, en ce cas. ne manquent
jamais.

(149) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 299

un segment abdominal. Chez Xylodiplosis praecox Winn. la peau est
également striée finement, mais les stries sont transversales, moins
serrées et moins régulières. Chez Porricondyla Rond. (Epidosis H. Lw.)
le corps est densément velu.

L. Verrues cingentes (Verrucae cingentes Rübsaamen, 1891). La plu-
part des larves sont couvertes de verrues de conformation diverse,
signalées d’abord par Dufour en 1845 et en 1846, et appelées par lui
« points granuleux et ronds qui, sur les côtés, forment comme des as-
pérités », tandis que Wachtl les à nommées plus tard, en 1884,
« écailles rondes portant un tubercule en leur centre » ; ce sont les
verrues cingentes (verrucue cingentes Rübsaamen, 1891). Leur forme
est assez variable et l’on distingue, d’après elle, les verrues planes,
dont la surface est dépourvue d’aspérités; les verrues granulées, dont
la surface est parsemée de petites granulations; les verrues ombili-
quées, dont le centre est relevé en ombilic; les verrues coniques et les
verrues corniculées. Sur le dessus du corps les verrues cingentes
sont ordinairement plus petites et plus saillantes en avant du segment
qu'en arrière.

2. Verrues spiniformes (Verrucae spiniformes Kieffer, 1894). Chez
les larves de Cécidomyies, la plupart des segments offrent sur la partie
antérieure (!) de leur face ventrale un bourrelet transversal, qui, vu au
microscope, se montre composé d’une multitude de minimes verrues
pointues, rarement obtuses, dirigées d'avant en arrière et alignées de
facon à former des lignes transversales plus ou moins régulières. Ce
sont les verrues spiniformes, observées d’abord par Ratzeburg, en 1841
[583]. Tantôt elles ne paraissent que sur le dessous du corps, par
exemple chez la plupart des Perrisia Rond.; tantôt elles se trouvent
aussi sur le dessus des segments, par exemple chez Camptomyia KiefT.,
Winnertzia Rond., Miastor Mein. etc. Chez les Cécidomyines, elles font
rarement défaut sur le dessous; elles commencent alors toujours au
second segment thoracique, et se trouvent ensuite habituellement sur
tous les segments suivants, y compris l’anal, rarement les deux der-
niers segments du corps en sont dépourvus. Diallactes croceus Kiel.
fait seul exception, en ce sens que les verrues spiniformes ne com-
mencent, chez cette espèce, sur le dessous du corps, qu'au troisième
segment thoracique; ce qui est le cas pour toutes les Lestrémines et
pour plusieurs Hétéropézines. Chez les Cécidomyines, on les voit en-
core le long de la fente anale, où elles forment de chaque côté plu-
sieurs lignes longitudinales (pl. 28 et 29). ”

(1) Jamais près du bord postérieur, comme certains auteurs l'ont cru.

300 JYJ. KIEFFER. (420)

Chaque bourrelet ou chaque série de verrues spiniformes a la forme
d'une ellipse transversale; chez les Lestrémines, les Hétéropézines
et encore chez plusieurs Épidosides, le bord postérieur de cette ellipse
est sinueux. Le nombre de rangées dont se compose une série est va-
riable. Chez Leslodiplosis Kieff., les segments abdominaux n’ont que
trois rangées transversales de verrues spiniformes; chez les autres
genres le nombre est ordinairement de 10 à 30. Une seule rangée peut
se composer de cent verrues. Le rôle de ces organes ne saurait être
douteux : ils servent à donner des points d'appui à la larve quand
elle se meut.

3. Verrues granuliformes (Verrucae granuliformes). Jappelle ainsi
de minimes granulations que l’on remarque sur le tiers ou le quart pos-
térieur du huitième segment abdominal. Elles existent chez toutes les
espèces du genre Contarinia Rond. {pl. 28, fig. 2).

4. Verrues en Crochets (Uncinuli ventrales Kielfer, 1896). Ces or-
ganes que j'ai considérés comme pseudopodes, en les signalant pour
la première fois, ne sont en réalité que des verrues spiniformes autre-
ment conformées et plus fortement développées. Elles sont chitineuses,
jaunes ou brunes, mobiles, et forment une rangée transversale avant les
rangées des verrues spiniformes. Chez Holoneurus Kieff.. elles sont fili-
formes et parallèles au plan du segment, avec le tiers supérieur courbé
en crochet vers le dehors, tandis que la moitié inférieure est reliée à
la cuticule par une partie moins fortement colorée. Chez Porricondyla
altbimana Winn., elles ont la forme d’un croissant et sont fixées par la
partie convexe. On trouve encore des verrues en crochets chez Rhizo-
myia corcumspinosa Rbs. (pl 33, fig. 2, a et 3, a).

Le but de ces organes est de permettre à Ja larve de se fixer forte-
ment à son support. Ce qui le prouve, c’est que, si lon veut détacher,
au moyen d’une épingle, une larve munie de ces crochets, l'opération
ne sera pas aussi facile que pour les larves dépourvues de semblables
organes. J’ai même remarqué une fois, qu'après avoir détaché avec une
épingle la moitié antérieure d’une larve de ZZoloneurus fulrus Kiefr.
lixée sur du bois pourri, l'insecte se maintenait encore cramponné
dans sa moitié postérieure.

D. Verrues en lamelles (Verrucae laminosae). Cette forme ne m'est
connue que pour deux espèces, Clinodiplosis caricis Kieff. et Rhizomyia
perpleæa Kieff. Chez cette dernière, les segments sont bordés latérale-
ment par une rangée de verrues hyalines, lamelliformes, un peu plus
longues que larges et avec l'extrémité échancréé en arc ou avec une
incision aiguë, Chez la première, les segments offrent sur le dessus

(121) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 301

trois rangées transversales de lamelles, aussi larges ou plus larges que
longues et échancrées à l’extrémité; la rangée intermédiaire renferme
les papilles dorsales. Le but de ces organes n’est inconnu (pl. 25, fig. 9).

IT. PAPILLES ET PSEUDOPODES. — Quelle signification faut-il donner ici
au terme de papilles ? Je pose d’abord cette question, parce que c’est à
ce sujet que M. Rübsaamen a fait tomber sur moi une véritable pluie
de « grossièretés allemandes », pour me servir de l'expression par la-
quelle il a désigné lui-même une de ses polémiques. Les premières ob-
servations sur les papilles proprement dites, c’est-à-dire sans soies ni
autre appendice, sont dues à l'Italien Géné [164] pour les papilles ven-
trales antérieures ; à N. Wagner, professeur de l’Université de Kasan
[789], pour les papilles sternales, que J. Mik a désignées plus tard
de ce nom (!) et à moi, en 1890, pour les papilles dorsales [268 p. 29].
Mais j'ai constaté plus tard que ces papilles pouvaient revêtir les formes
les plus diverses, et passer insensiblement de l’une à l’autre, depuis
celle d’une calotte sphérique, jusqu’à celle d’un cône effilé et presque
sétiforme, qu'elles pouvaient en outre porter en leur centre une soie
parfois à peine perceptible avec les plus forts grossissements, et offrant
ensuite toutes les transitions jusqu'à celle d’une soie longue, rigide et
brune. Faut-il étendre le terme de papilles à toutes ces formes? Dans
le cas contraire comment faut-il limiter son extension? L'auteur alle-
mand que nous venons de nommer considère comme papilles « de
minimes verrues » auxquelles il conserve encore cette même dénomi-
nation de papilles, quand elles portent une « minime soie » [632, p. 339],
mais la leur retire quand elles sont munies d’une « soie bien dévelop-
pée »! [l. c. et 626, p. 384]. C’est ainsi qu’il est amené à écrire que les
larves de Lestodiplosis necans Rbs. et vorans Rbs. sont dépourvues
de papilles.

Je considère toutes les larves de Cécidomyies comme formées plus
ou moins d’après le même modèle. Les papilles peuvent différer quant
à leur nombre, et c’est ce qui nous donnera les meilleurs caractères
pour grouper les larves en genres et en sous-familles, comme je l'ai in-
diqué dans mon travail sur les larves [290], mais on les retrouve plus
ou moins exactement avec la même disposition chez toutes les espèces.
Il faut donc étendre le terme de papillae à toutes les formes, et c’est ce

(1) Dans mon travail « Ueber die Papillen der Gallmückenlarven » [292],
j'ai attribué cette découverte à J. Mik. Grâce à l'obligeante communication
de M. le baron von Osten-Sacken, qui est en possession d'un des rares exem-
plaires de l'ouvrage in-folio de N. Wagner, j'ai su que le professeur de Kasan
avait signalé et dessiné les papilles sternales avant Mik.

*
302 J.-J. Ki£FFER. (122)

que j'ai fait en écrivant : « papilles avec soies... ou papilles avec un
appendice tubuleux! etc. » D'après cette manière de voir, les Lestodi-
plosis Kiel. rentraient dans le cadre ordinaire, et je pouvais y décrire
toutes les sortes de papilles qu’on trouve sur les autres larves de Céci-
domyies.

J'entends donc ici par papilles des mamelons à contour circulaire et
portant en leur centre un ou plusieurs petits boutons, ou une soie, ou un
appendice quelconque. De même que les verrues spiniformes, les pa-
pilles offrent d'importants caractères pour la détermination des larves.
Leur nombre, leur forme et parfois encore leur groupement varient se-
lon les espèces, les genres, les groupes et même les sous-familles. Nous
les répartissons de la facon suivante, basée sur leur disposition ou
leur emplacement (!).

A. Papilles céphaliques. (Papillae cephalicae Kieffer, 1895). Chez
toutes les larves de Cécidomyies, la tête est munie, sur le dessus et sur
le dessous, de papilles extrêmement petites, difficiles à découvrir et
dont le groupement et le nombre semblent varier avec les espèces,
mais dont la forme est toujours la même, c’est-à-dire celle d’une pa-
pille simple et inerme. Ces papilles que j'ai signalées d’abord en 1894
[280, p. 44], ne sont guère utilisables pour la détermination, à cause de
leur extrème petitesse.

2. Papilles collaires (Papillae collares Thomas, 1892 ; pl. 25, fig. 44,
a). Chez les Cécidomyines, le second segment porte, sur le dessus et
sur le dessous, deux papilles collaires, ordinairement simples et iner-
mes, signalées d’abord par M. le docteur Fr. Thomas [722, p. 357]; on
y voit en outre une papille collaire située de chaque côté, conformée
comme les quatre autres, et que j'ai signalée en 1895 [290, p. 40 et 292,
p. 418]; j'ai indiqué la même année que chez les Lestrémines les papil-
les du dessus du cou sont plus nombreuses, diversement conformées,
c’est-à-dire avec la forme et le nombre des papilles dorsales et latérales
des segments suivants [291].

(1) Quant à leur forme, nous distinguons les papilles simples (p. simplices),
quand le mamelon ne porte qu’un bouton ou une soie, etc., en son centre; quand
il en porte plusieurs, nous l'appelons p. composée (p. composilae). Les unes
et les autres peuvent porter un ou plusieurs boutons sans aucun prolongement
ni soie; c'est ce que nous nommons p. inermes ; quant aux expressions de pa-
pillae tubigerae, bacilligerae (appendice en forme de bätonnet), squami-
gerae (appendice en forme de cônes de sapin), penicillatae (appendice en forme
de pinceau), corniculatae (en forme de crochets ou de cornes), elles n’ont pas
besoin d'autre explication.

(193) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 303

3. Papilles sternales et pleurales (pl. 28, fig. 1 a, b). Le premier segment
thoracique offre à la partie antérieure de sa face ventrale, de chaque
côté de l’extrémité de la spatule ou même plus en avant que celle-ci,
une papille simple et ordinairement inerme, rarement double et avec
soie (pl. 28, fig. 6, a); ces deux papilles, découvertes par N. Wagner
[789] (1) ont été nommés par J. Mik, papillae sternales [491, p. 213].
On les retrouve encore sur les deux autres segments thoraciques où
elles sont ordinairement situées immédiatement en arrière du bourrelet
portant les verrues spinilormes, rarement au milieu de ce bourrelet.
Dans le genre Asphondylia et chez quelques Lestrémines, elles sont
sétigères; dans les genres Lestodiplosis Kieff. et Arthrocnodax Rhs.,
elles ont pris la forme de pseudopodes aux derniers segments thora-
ciques, et paraissent complètement évanouies au premier segment
thoracique, dans le premier genre, mais distinctes et de la forme or-
dinaire, dans le second.

De chaque côté de la spatule, un peu plus bas que les papilles ster-
nales, apparaissent sur un bourrelet plus ou moins proéminent et
étendu, trois papilles formant une ligne transversale faiblement arquée.
Ces six papilles forment ensemble un are de cercle ayant sa convexité
dirigée par en bas. Nous les retrouvons avec la même disposition sur
les deux autres segments du thorax. Ce sont les papilles pleurales
(papillae pleurales). Entrevues par Perris [576, pl. I, fig. 35], elles ont
été décrites plus tard distinctement par M. Rübsaamen [626, p. 384],
mais cet auteur à encore confondu sous le même nom de papilles pleu-
rales une des papilles latérales située plus en dehors sur les côtés de
la larve (2. c., pl. XIV, fig. 4, g) (?). Nous pouvons maintenant distin-
guer pour les papilles pleurales les variations suivantes.

1 Cas. Les quatre papilles pleurales internes (p. pleurales interio-
res Kieff., p. laterales Rbs.) sont composées; les deux externes (p.
pleurales exteriores Kieff., p. pleurales Rbs. pr. p. et laterales Rbs.
pr. p.), sont simples (pl. 28, fig. 1-4, b). Ici encore nous pouvons dis-
ünguer diverses variations, selon les divers genres ou les sous-familles :
tantôt la p. pl. externe est inerme sur les trois segments thoraciques,
ce qui est un caractère distinctif pour la plupart des genres de Diplo-
sides (pl. 28, fig. 1, e); tantôt elle est sétigère sur ces trois mêmes

(1) Voir la note à la page précédente,

(2) La véritable papille pleurale externe, qui est simple et inerme, lui a
échappé; celte papille sétigère qu'il appelle soie, tenant lieu de papille pleu-
rale, se retrouve aussi au premier et au troisième segments thoraciques, ainsi
qu'aux segments abdominaux, et forme une des deux papilles latérales.

*
30% J.-J. KiEFFER. (124)

segments, par exemple chez la plupart des Oligotrophus Latr., chez
Choristoneura sarothamni KielT., etc. (pl. 29, fig. 3, b); tantôt elle est
inerme au premier segment thoracique et sétigère aux deux suivants,
ce qui est un caractère distinctif pour les genres Rhabdophaga, Perri-
sia Rond., Dasyneura Rond. (pl. 28, fig. 3, e).

De même les quatre pleurales internes sont tantôt inermes, ce qui
est le cas pour la plupart des espèces (pl. 28, fig. 1, b); tantôt séti-
sères, ce qui a lieu pour Asphondylia H. Lw. et quelques autres es-
pèces (pl. 29, fig. 3, b); d'autre part, elles peuvent être composées de
différentes facons; parfois elles portent {rois boutons tantôt inermes,
ce qui est la règle générale pour les Cécidomyines, avec quelques
genres qui fontexception (pl. 28, fig. À, b), tantôt sétigères, par exem-
ple plusieurs Épidosides; d’autres fois elles ne sont munies que de
deux boutons soit inermes, ce qui est la règle pour les Lestrémines
(pl. 29, fig. 4, b), soit sétigères, par exemple dans le genre WMikiola
Kieff. (pl. 29, fig. 3, b) et peut-être chez quelques Asphondylia H. Lw.

2 Cas. Les six papilles pleurales sont simples. Ce second cas, bien
moins fréquent que le premier, nous offre les trois variations suivan-
tes : ou bien toutes les six papilles sont sétigères, ce qui est le cas
pour Lestodiplosis Kieff. (pl. 29, fig. 9, b), ou bien elles sont toutes
inermes, ce quia lieu pour le premier segment thoracique de plusieurs
larves, par exemple de celle qui vit dans le parenchyme des feuilles de
Quercus lusitanica, et de celle qui forme des galles en urne sur les
nervures d’'Ulmus campestris; ou, enfin, les quatre papilles internes
sont inermes et les deux externes sont sétigères, ce qui existe entre
autres pour les deux derniers segments thoraciques des deux larves
que nous venons de citer.

4. Papilles ventrales (Papillae ventrales, pl. 28, fig. 2, c, d). Les
sept premiers segments abdominaux portent sur le dessous deux sé-
ries de papilles que je désigne toutes du nom de papilles ventrales. La
première série, que j'ai appelée p. v. anteriores, forme une rangée
transversale ordinairement composée de quatre grandes papilles situées
au bord inférieur du bourrelet qui porte les verrues spiniformes ou
même parfois sur celui-ci; chez Rhopalomyia Rbs. elles ne sont qu’à
deux. Ces papilles ventrales antérieures, auxquelles M. Rübsaamen
veut restreindre le nom de papillae ventrales Rbs., ont été signalées
d'abord par Géné, en 1832, sous le nom de « minimes boutons char-
nus » (1), M. le D' Fr. Thomas a montré que ces papilles se trouvent

(1) « À questo movimento di ascesa giovino certi minutissimi bitorzoletti

(4125) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 305
aussi en nombre égal, au 8 segment abdominal, mais plus rappro-
chées du bord postérieur de ce segment.

En arrière de cette première rangée, et en arrière d’un pli transver-
sal du segment, se voit une seconde série que j'ai signalée pour la pre-
miere fois en 1894 et que j'ai appelée p. v. postérieures (p. v. poste-
riores). Chez les Cécidomyines (pl. 28, fig. 2, d), elle se compose de
deux papilles situées dans la moitié postérieure de la face ventrale des
sept premiers segments abdominaux etne dépassant jamais le bourrelet
aux verrues spiniformes, ce qui empêchera de les confondre avec les
papilles latérales. Elles sont inermes chez la plupart des Diplosides, sé-
tigères chez les Lasioptérides. Dans la sous-famille des Lestrémines et
chez la plupart des Épidosides, les papilles ventrales postérieures for-
ment une série transversale de quatre (pl. 29, fig. 40, b).

Le 8° segment abdominal est toujours dépourvu de papilles ven-
trales postérieures. Dans les genres Lestodiplosis Kieff., Arthrocnodax
Rbs. et Rübsaamenia Kielf., les papilles ventrales antérieures sont rem-
placées par des pseudopodes (pl. 29, fig. 9, a) ; mais, chose singulière,
tandis que chez toutes les autres larves de Cécidomyies, les papilles
ventrales antérieures représentent toujours un nombre pair, à savoir
quatre, rarement deux, nous trouvons ici à leur place, chez les repré-
sentants des deux premiers genres, trois pseudopodes, et deux chez les
représentants du troisième.

ÿ. Papilles anales (Papillae anales Kieffer, 4895, pl. 27, fig. 4-7). Elles
se trouvent sur le dessous du segment anal, au nombre de deux de
chaque côté de la fente, chez les Lasioptérides; de trois de chaque
côté, chez la plupart des Diplosides, de quatre ou de cinq de chaque
côté, chez les Épidosides et les Lestrémines. Elles sont toujours sim-
ples et inermes. Dans le genre Winnertzia, la dernière de ces papilles
se prolonge parfois sous forme d’appendice plurilobé.

6. Papilles ellipsoïdales (Papillae ellipsoidales Kieffer, 1895, pl. 29,
fig. 10, c). Comme leur nom l'indique, ces papilles ont toujours la forme
d'une ellipse transversale; elles sont petites, peu apparentes, et situées
au nombre de quatre sur le dessous des huit premiers segments abdo-
minaux, en avant du bourrelet aux verrues spinilormes, et au nombre
de deux sur le dessus des mêmes segments, au bord antérieur. Chez
les larves qui sont dépourvues de verrues spinilormes au 8° segment

carnosi che parvemi di osservare alla parte sua inferiore » [164, p. 289]. Cela
ne peut pas s'appliquer aux papilles ventrales postérieures qui, chez cette es-
pèce, sont à peine proéminentes,.

Ann. Soc. Ent. Fr., LxIX, 1900. 20

*
306 J.-1. KiErrER. (426)

abdominal, comme c’est le cas pour Winnerlzia Rond., Camplomyia
Kieff., Diallactes KielT., ces verrues sont plus reculées du bord anté-
rieur sur ce segment que cela n’est ordinairement le cas. Chez les
Épidosides et les Lestrémines, on en voit encore deux sur le dessous
et deux autres sur le dessus du cou, ainsi que sur les deux derniers
segments thoraciques, mais celles du cou sont rapprochées du bord
postérieur et celles du thorax se trouvent en arrière des verrues spi-
niformes, quand celles-ci existent.

7. Papilles dorsales et latérales {Papillae dorsales et laterales Kief-
fer, 4895, pl. 25, fig. 1-10). J'ai désigné sous le nom de papilles dorsa-
les, la rangée transversale de papilles comprise sur la partie dorsale
des segments thoraciques et des huit premiers segments abdominaux,
entre les deux stigmates d’un segment. Les papilles situées de chaque
côté en dehors des stigmates sont les papilles latérales. Les papilles
dorsales sont ordinairement au nombre de six chez les Cécidomyines,
rarement de huit, par exemple chez Rhopalomyia Rbs., ou de dix,
par exemple chez Camptomyia Kieff. Sur le huitième segment abdo-
minal, leur nombre n’est que de deux chez les Cécidomyies (pl. 27,
lig. 1, 3), à l'exception des Épidosides, de quatre pour toutes les au-
tres espèces (pl. 27, fig. 8). Cette disposition des papilles dorsales du
8 segment abdominal est très importante pour la détermination des
larves. L'unique exception que je connaisse est celle de Rhizomyia
perpleæa Kieff., où le huitième segment porte, entre les deux stigmates,
quatre papilles dorsales, comme chez les Épidosides et les Lestrémines
dont cette espèce ne fait nullement partie, mais comme ici on trouve
encore une paire de stigmates sur le segment anal, et qu'entre ces
deux stigmates il existe deux papilles dorsales comme chez les Diplo-
sides et les Lasioptérides, cette exception n’en est pas une en réalité.
Il suffit de formuler autrement la règle et décrire : « deux papilles
dorsales entre la dernière paire de stigmates », au lieu de dire : « deux
papilles dorsales au 8° segment abdominal » (pl. 25, fig. 4).

Les papilles latérales (pl. 29, fig. 8) sont au nombre de deux chez les
Lasioptérides, généralement de 3 ou de 4 chez les autres espèces.
L'une ou Pautre peut être située sur la face ventrale du segment, mais
toujours en dehors des verrues spiniformes et jamais derrière elles, ce
qui empêche de les confondre avec les papilles ventrales postérieures.

Quant à la forme des papilles dorsales et latérales, elle est bien va-
riée; elles sont tantôt inermes, chez la plupart des Diplosides, des
Épidosides, ete., tantôt sétigères, comme chez tous les Lasioptérides ;
d’autres fois tubigères, par exemple Holoneurus KielT. ; ou bacilliformes,

(427) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 307

par exemple chez Dicroneurus venustus Winn. (pl. 2. fig. 2); ou en
appendices coniques, comme chez Rübsaamenia Kielf.; ou en cône de
sapin, par exemple Clinodiplosis caricis Kieff.; ou enfin connées par
deux etrenflées en vésicule, comme chez Cecidomyia pini D. G. (pl. 27,
fig. {1) ou non renflées (pl. 27, fix. 12).

8. Papilles terminales (Papillae terminales Kieffer, 189%, pl. 26 et
27). Je désigne sous ce nom les papilles que l’on voit sur le dessus du seg-
ment anal, à l'extrémité. Elles servent encore plus que les autres papilles
à caractériser les genres. Perris distinguait déjà [576, p. 183], d’après les
papilles terminales, trois groupes de larves, selon que le segment anal
était simple, quadridenté et à deux crochets. La première forme, par
laquelle il entend l’absence de dents ou de crochets, mais non de soies,
est dite l'ordinaire. La seconde recoit comme type Contarinia trilici,
ce qui est encore exact, si l'on considère que Perris ne fait pas men-
tion des quatre petites soies alternant avec les quatre papilles cornées.
Enfin, pour la troisième, il cite comme exemples, Campiomyia populi
Duf, et Winnertzia salicis Bouché. Les papilles terminales offrent les
formes que nous venons de mentionner pour les papilles dorsales, et
en outre celle de crochets et celle de mamelon terminé par un bou-
quet de poils formant pinceau (pl. 26, fig. 43).

Quant à leur nombre, il est ordinairement de quatre de chaque côté,
rarement seulement de trois de chaque côté, par exemple Lestodiplosis
Kielf., ou de cinq de chaque côté, par exemple Bryocrypta Kieff.

9. Pseudopodes (pl. 29, fig. 5 et 9, a). Ce ne sont que des papilles ven-
trales antérieures ou des papilles sternales autrement conformées, c’est-
à-dire prolongées en forme d’appendice pédiforme, à extrémité souvent
évasée et recourbée ou munie de cils. On les a observés dans trois
genres, qui sont : Lestodiplosis Kieff., Arthrocnodazx Rbs. et Rübsaamenia
Kieff. Bouché a décrit en 1834 [43, p. 25] les pseudopodes de Lestodi-
plosis fuscicollis Bouché; plus tard Perris signalait en 1855 les pseudo-
podes chez Lest. entomophila Perr. et en 1871 [576, p.170] ceux de Lest.
septemguttata Kieff. (pictipennis Perr. non Meig.) et pensait que la par-
tie évasée « devait faire office de ventouse ». C’est par erreur que
Bouché, et après Jui Rübsaamen [623] pour Lest. vorans Rbs. et necans
Rbs. indiquent deux pseudopodes pour les segments abdominaux
comme pour les thoraciques: c’est de même par erreur que Perris en
indique deux pour Lest.entomophila et trois pour Lest. seplemguttala ;
toutes les observations que j'ai faites sur les larves de Lestodiplosis
confirment ce que j'ai écrit en 189% [289, p. 420], c’est-à-dire que le
Aersegment thoracique est toujours dépourvu de pseudopodes,les deux

*

308 J.-J. KIEFFER. (128)

segments suivants en portent deux et les sept premiers segments abdo-
minaux en ont trois; au segment anal ils sont plus courts et autrement
conformés; avec Perris je pense que l'extrémité évasée en entonnoir
peut faire office de ventouse. Cette disposition des pseudopodes est
encore la mème dans le genre Arthrocnodaæ Rbs.,chez lequel Targioni-
Tozetti les a d’abord observés et figurés [704] mais sans indiquer le
nombre, tandis que dans le genre Rübsaamenia Kielf. les pseudopodes
font défaut au thorax et se trouvent répartis par deux sur les sept
premiers segments abdominaux, comme je l'ai écrit en 1894 [289].

F. Stigmates de la Larve.

Toutes les larves de Cécidomyies sont péripneustiques. On y trouve
neuf paires de stigmates réparties de la façon suivante. La première paire
est située sur le segment prothoracique, toujours en arrière de la rangée
des papilles dorsales; les sept paires suivantes se trouvent sur les côtés
des ‘sept premiers segments abdominaux et toujours en avant de la
rangée des papilles dorsales ; enfin la dernière paire est placée sur le
huitième segment abdominal, ordinairement éloignée des côtés et dans
l'alignement des papilles dorsales. Parfois ces deux derniers stigmates
aboutissent à l'extrémité de chacun des côtés du huitième segment, ce
qui est le cas pour Contarinia Rond.; chez Wycodiplosis boleti Kieff. ils
se trouvent au bord postérieur du 8& segment, en arrière de la 1e pa-
pille latérale (pl. 27, fig. 2); chez Dicerura Kiel. (Iridomyza Rbs.) cha-
eun d'eux apparait à l'extrémité du côté interne de deux longs appendi-
ces dépassant de beaucoup le segment anal; une disposition analogue
a lieu encore pour les jeunes larves d’Arnoldia Kieff. (pl. 34, fig. 41).
Chez Cecidomyia pini D. G. et resinicola O. $., ils sont fixés à l’extré-
mité de deux lobes du huitième segment recouvrant le segment anal,
comme il a étéexpliqué plus haut, quand il était question de la segmen-
tation; ils ontici l'aspect d’un cône renversé et tronqué, d’un brun noir,
bordé à son extrémité par quatre prolongements cylindriques de la
même couleur, qui ne correspondent nullement aux huit papilles ter-
minales des autres larves, comme la cru M. Rübsaamen [626, p. 387].
Chez la première de ces deux dernières larves, les stigmates des sept
premiers segments abdominaux sont fixés à la base renflée de la pre-
mière des deux papilles latérales (pl. 27, fig. 9-10). En règle générale, les
stigmates des larves sont peu proéminents, à peine plus longs que gros,
subeylindriques, avec la base un peu plus large que le sommet qui est
tronqué, et traversés en leur milieu par la trachée qui aboutit à leur
extrémité. Nous verrons plus loin, en parlant des changements que
subissent les larves pendant leur phase de nutrition et de croissance,

(129) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 309

que le sommet de leurs stigmates peut paraître bordé de prolongements
cylindriques, comme cela a lieu pour les stigmates postérieurs de la
larve adulte de C. pini D. G.

La seule larve qui fasse exception quant au nombre des stigmates,
est celle de Rhizomyia perpleæa Kieff., qui porte dix paires de stig-
mates, dont la dernière est située sur le segment anal (pl. 25, fig. 4).
Je ne connais aucun autre cas où le segment anal soit muni de stigmates.
On a cité encore, mais à tort, deux autres exemples. C’est ainsi que
Ratzeburg [583] et tout récemment M. Rübsaamen [642, p. 536] ont
écrit que chez Cecidomyia pini la dernière paire de stigmates se trouve
sur le segment anal; nous venons de voir que c’est là une erreur,
D'autre part, M. le baron von Osten-Sacken écrit de Cecidomyia resini-
cola O. S..: « No lateral spiracles were apparent, but in their stead, a
pair of horny approximate tubes at the end of the body, not unlike the
respiratory tubes of the larvae of Syrphus » [560, p. 345]. Désireux de
connaître par autopsie une larve de Cécidomyie qui fût métapneustique
et qui se distinguàt de toutes ses congénères par l'absence de stigmates
sur les huit premiers segments abdominaux, je m'adressai à plusieurs
entomologistes des États-Unis, c’est-à dire de la patrie de cette larve;
grâce à l’obligeance de M. C. Marlatt, de Washington, je fus bientôt en
possession des larves désirées, renfermées vivantes dans des amas de
résine recouvrant des portions de branches de Pinus inops. Disons tout
d’abord que cette résine abritait aussi des chenilles qui se métamor-
phosèrent au même endroit et qui avaient sans doute provoqué cette
extravasion de la résine (!), comme cela est le cas en Europe pour la
chenille de Retinia resinella L. Quant aux larves de Cécidomyies vivant
au milieu de cette résine, elles ont neuf paires de stigmates, réparties
comme chez C. pini D. G. Elles ne diffèrent du reste de cette der-
nière que par leurs papilles dorsales et latérales libres et non renflées,
par l’absence de spatule et les verrues spiniformes.

Plusieurs anciens auteurs, et récemment encore Lindemann [369] et
P. Marchai [446, p. 19] indiquent dix paires de stigmates pour la larve
de Mayetiola destructor. C’est ainsi que ce dernier écrit : «Il y a donc en
tout dix paires de stigmates, une paire pour le 1° segment somatique
et une paire pour chacun des segments de 3 à 11... Le 2° segment so-
matique ne présente pas de stigmates ». D’après mes observations, la

(1) Comstock [72, p. 256-257] et récemment Townsend [756] ont trouvé
dans la résine, en même temps que les larves de Cercidomyia resinicola O.S$.,
les chenilles d'un Lépidoptère, que Fernald a décrit sous le nom de Retinia
Comstockiana.

*
310 J.-J. KI£FFER. (130)

larve en question, aussi bien que les autres, est dépourvue de stig-
mates aux deux derniers segments thoraciques et n’a done que neuf
paires de stigmates, Meinert écrit de Wiastor metraloas M. [482, p. 397] :
« Je veux encore remarquer que j'ai toujours trouvé une paire de
stigmates au 3° segment; il y à donc en tout dix paires de stigmates ».
Je connais deux sortes de larves de WMiastor ; elles n’ont que neuf paires
de stigmates, comme les autres espèces. Bien que celle de M. metra-
loas Mein, me soit inconnue, et malgré l'autorité de Meinert, je crois
qu'il ya eu erreur ici, et que cette erreur à été occasionnée par la ra-
milication latérale de la grande trachée, au 3° segment thoracique,
comme nous allons le voir en traitant de l'appareil respiratoire.

2% Anatomie des larves de Cécidomyies.

Nous traiterons successivement : I, de Pappareil respiratoire; II, de
l'appareil circulatoire ; IT, de l'appareil digestif; IV, du système ner-
veux; V, du système adipeux.

JL. APPAREIL RESPIRATOIRE (pl. 30, fig. 4 et 2).— Il est formé par deux
troncs latéro-dorsaux et deux troncs plus faibles latéro-ventraux, qui
s'étendent, sous forme de lignes brisées, de la première paire de stigmates
à la dernière. Les premiers divergent à leur extrémité postérieure chez
Contariniaet Dicerura, mais pas chez les autres espèces. IIS sont tou-
jours reliés par dix paires d’anastomoses qui correspondent aux seg-
ments somatiques # à 13: les neuf premières paires de ces anastomoses
émeltent, après leur tiers supérieur, un rameau externe et transver-
sal, qui, aux sept premiers segments abdominaux, aboutit à un stig-
mate; quant au rameau externe et lransversal du 2 segment thora-
cique, il est très faible et s'arrête tantôt brusquement, tantôt en de
lines anastomoses; mais celui du 3° segment thoracique est à peu près
aussi gros que ceux des segments abdominaux et s'arrête brusquement,
de sorte que l’on peut facilement être induit en erreur et croire qu'il
aboutit à un stigmate ; mais on pourra toujours remarquer que son ex-
trémité n’est pas en communication avec le dehors et qu'elle n’atteint
pas la surface du corps. A chacune des dix anastomoses qui relient
un tronc latéro-dorsal à un tronc latéro-ventral on constatera que ceux-
ci sont comme tirés violemment vers le côté, en formant un angle.

D'autre part les deux troncs latéro-dorsaux sont reliés entre eux par
sept anostomoses transversales et très droites, situées en arrière des
anastomoses reliant les troncs latéro-dorsaux aux troncs latéro-ven-
traux (fig. 4). A leur point d'insertion, le tronc latéro-dorsal est comme
tiré vers la médiane, ce qui lui donne l'aspect d'une ligne brisée. Ces sept

(131) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 311

anastomoses correspondent aux sept premiers segments abdominaux,
Elles ne forment pas un canal unique, mais chacune est formée de deux
pièces d’égale longueur, et se touchant par leur bout qui est renflé en
formant une ampoule réfringente ; accidentellement ces deux pièces ne
sont pas accolées l’une à l’autre par leur partie évasée, mais elles pa-
raissent séparées, l’une étant dirigée par en haut, et l'autre par en
bas (pl. 30, fig. 9). Un peu avant l'extrémité renflée en ampoule, cha-
cune de ces pièces émet en avant une anastomose à divisions très fines
et très nombreuses, ne pénétrant pas jusqu’au segment antérieur (fig. 9).
Au premier segment thoracique , Panastomose reliant les deux troncs
latéraux fait tantôt défaut, comme aux deux suivants, par exemple chez
Mycodiplosis boleti Kieff., tantôt elle existe, mais de la facon suivante :
de chaque stigmate du segment prothoracique s'étend une anastomose
dirigée en dedans ou vers le bord postérieur de ce segment; à cet en-
droit les deux pièces sont reliées entre elles par un court rameau trans-
versal et droit, puis elles pénètrent, étant parallèles l’une à l’autre,
jusqu’au tiers antérieur du segment suivant où chacune d'elles s’en-
lonce dans un des lobes du cerveau et s'y divise en des rameaux
nombreux et très courts, enveloppant le cerveau; cela est le cas par
exemple pour plusieurs Bremia et Contarinia Steini Karsch. La larve
de Mayetiola destructor Say offre, selon M. Marchal, huit anastomoses
transversales reliant les deux troncs latéro-dorsaux et correspondant
aux huit premiers segments abdominaux. Celles de Cecidomyia pini et
resinicola ont, comme les larves amphipneustiques, une grosse anasto-
mose, presque aussi large que les troncs, et composée d’une seule pièce,
à l’avant-dernier segment somatique (pl. 30, fig. 4). Les six segments
précédents renferment chacun une anastomose extrêmement fine (1).

Si les troncs latéro-dorsaux ne sont pas réunis entre eux dans les
segments thoraciques, mais seulement dans les segments abdominaux,
les troncs latéro-ventraux (pl. 30, fig. 2) le sont au contraire dans les
segments thoraciques et non plus dans les segments abdominaux ; au
premier segment thoracique, lanastomose reliant les deux trones latéro-
ventraux se compose de deux pièces formant l’une avec l’autre un angle
ouverten avant, et terminées chacune par une ampoule par laquelle l'une
est accolée à l’autre ; un peu en avant de cette ampoule se voit, sur chaque
pièce, une fine anastomose atteignant le segment suivant. Au second

(1) Ce n’est pas seulement par leur appareil respiratoire que ces deux larves
ont un@ analogie avec celles des Muscides et des Syrphides, mais aussi par
leurs mouvements qui rappellent ceux des larves de Syrphides, comme Osten-
Sacken l’a remarqué fort justement pour €, resinicola,

«

312 DV. KIEFFER. (439)

segment l’anastomose ne diffère de celle du premier que par l’absence
d'ampoule; elle ne se compose donc que d’une pièce continue ; cela
estencore le cas pour le 3° segment thoracique, où l’anastomose diffère
encore de celle des deux précédents, en ce qu’elle est droite. Bien
qu'aux segments abdominaux les deux troncs latéro-ventraux ne soient
plus reliés entre eux, ils émettent à chaque segment, au côté interne,
un rameau plus ou moins long et courbé en angle à sa base; chez Con-
tarinia Steini Karsch, ces rameaux sont presque parallèles au tronc et
s'étendent en avant en traversant trois ou quatre segments.

Chez Cecidomyia pini D. G._et resinicola O.S., les deux troncs latéro-
dorsaux ont la forme de lignes brisées dans leur partie antérieure;
au À segment abdominal ils s’élargissent fortement, deviennent très
droits et demeurent ainsi jusqu’à leur extrémité où ils sont bien quatre
fois aussi gros que les trachées des autres larves (pl. 30, fig. 4).

L'appareil respiratoire des larves des Lestrémines et des Hétéropé-
zines se distingue facilement de celui des Cécidomyines : les deux troncs
latéro-dorsaux ne s'arrêtent pas à la dernière paire de stigmates, comme
chez ces dernières, mais se prolongent sous forme de deux lignes
presque droites, en diminuant insensiblement d'épaisseur et en conver-
geant faiblement l’un vers l’autre; ils traversent le segment anal et sont
visibles jusqu’à l'extrémité du cône tronqué et rétractile qui porte l'anus.
Au segment anal ils émettent au côté interne un rameau dirigé obli-
quement en arrière et se terminant par un faisceau capillaire commun.

IT. APPAREIL CIRCULATOIRE (pl. 30, fig. 8 et 106). — Pour la larve de
Miastor metraloas Mein., N. Wagner a trouvé que le cœur ou vaisseau
dorsal s’étend depuis le 3 segment jusqu'au 4%, où il finit par une
partie élargie en cul-de-sac et munie de deux orifices cardiaques garnis
de valvules; il distingue encore, outre ce cul-de-sac, une succession de
neuf ventricules qui correspondent aux neuf paires de stigmates et
dont chacun est muni de deux paires d’orifices cardiaques. Des larves
plus vieilles avaient sur la paroi du cœur des corpuscules rénilormes,
groupés par paires, que Wagner considère comme faisant probable-
ment office de reins. Les pulsations observées étaient lentes, 30 à 40 par
minute [790]. Pagenstecher observe au contraire 80 pulsations par
minute chez la larve qu'il a décrite [568, p. 409]. Pour les larves de
Mycodiplosis Reaumuri Kieff. et Contarinia Steini Karsch je n’ai observé
que 25 à 30 pulsations par minute et seulement sept ventricules corres-
pondant environ aux deux derniers segments thoraciques et aux cinq
premiers segments abdominaux. M. le docteur Marchal à décrit de la
facon suivante l’appareil circulatoire de Mayetiola destructor Say :

(133) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 313

« Pour bien voir le système circulatoire, il faut choisir de préférence
une larve dont le développement ait été retardé par suite d’une nourri-
ture insuffisante et dont le système adipeux se trouve réduit (1). En
examinant alors la larve de profil, avec une légère compression, on
pourra bien voir le vaisseau dorsal se contracter tout le long du corps.
Il commence à la partie antérieure du 3° anneau, la tête non comprise,
et se termine dans la portion antérieure du 10°, Il est formé d’une suc-
cession de sept ventricules élargis au milieu de chaque segment et ré-
trécis dans les parties intermédiaires. Au niveau des portions élargies
se trouve de chaque côté un grand orifice en forme de boutonnière
dont on voit bailler les lèvres à chaque pulsation. La partie antérieure
du cœur forme un bulbe plissé (1 ventricule) se continuant en avant
par l'aorte et de chaque côté duquel se trouvent les orifices de la pre-
mière paire. La partie postérieure se termine en un cul-de-sac et se
trouve placée dans le petit quadrilatère que forment en arrière les tra-
chées dorsales. Il est à remarquer que les orifices du cœur se trouvent
au niveau de la portion élargie du ventricule et non pas de la portion
rétrécie.

« Au-dessous du cœur s'étend le plancher péricardique sur lequel
courent deux cordons cellulaires; ces cordons sont formés par des
amas de grosses cellules péricardiques granuleuses correspondant aux
expansions aliformes du diaphragme péricardique ; chacun de ces amas
s’elfile par ses parties postérieure etantérieure pour se réunir au groupe
suivant, ou bien pour en rester séparé par un intervalie plus ou moins
erand. Les deux derniers amas de ces cellules péricardiques corres-
pondent au 40° et au 9° segment et sont remarquables par leur épais-
seur qui les rend facilement divisibles; ils sont formées par quatre
masses cellulaires disposées en quadrilatère sur le plancher péricardique
au-dessous du cœur ; les deux dernières masses dépassent en arrière le
cul-de-sac du cœur qui repose sur elles. Les expansions aliformes du
péricarde et les masses péricardiques sont placées un peu en avant des
orifices du cœur. Les orifices cardiaques sont garnis de valvules comme
chez tous les insectes ; mais les valvules opposées de chaque côté de la
ligne médiane du corps ne paraissent pas s’accoler l’une à l’autre, au
moment de la contraction du cœur; aussi je ne pense pas qu’elles aient
un rôle dans la circulation à l'intérieur du vaisseau dorsal; leur rôle se
borne à empêcher le sang qui est entré dans le cœur d’en sortir par un

(1) Ces conditions sont remplies, si l’on choisit une larve encore éloignée de
sa maturité. Il est préférable aussi de prendre une larve dépourvue de tégu-
ments culanés, par exemple celle de Contarinia,

314 I.-T. Kierrer. (134)

autre orilice que par celui de laorte, De la partie antérieure du corps
part l'aorte qui plonge immédiatement en se dirigeant obliquement de
haut en bas vers le cerveau, entre les deux glandes salivaires; elle se
termine entre les deux lobes cérébraux au niveau du collier œsopha-

gien ».

IT. APPAREIL DIGESTIF, — Les organes à examiner sont les parties
buccales, l’'œsophage, l'estomac, le tube intestinal, les glandes et les
tubes de Malpighi.

1° Pièces buccales, « La partie la plus importante de la tête de la
larve est l'antérieure qui contient le squelette. I ne faut Y chercher
que les parties buccales ; mais quelles sont-elles? Je cherche vainement
une pièce analogue des màächoires supérieures qui, chez les Muscides,
paraissent si nettement sous forme de deux crochets ressortant et mo-
biles.… Impossible de trouver une explication pour les parties chiti-
neuses du squelette ». C’est en ces termes que Ratzeburg [583, p. 238]
s'exprime au sujet des parties buccales deslarves de CecidomyiapiniD.(G.
et brachyntera Schw. Pas plus que Ratzeburg, les auteurs qui se sont
occupés de cette question après lui n’ont réussi à en donner une ex-
plication satisfaisante. Récemment Büsgen, dans son Étude sur la larve
et la galle de Mikiola fagi Hart., avoue qu'il « n’a pas pu voir distincte-
ment les parties buccales » de cette larve. « Ce qui est certain, écrit-il
encore, c'est que ces larves ne sucent pas à la façon des Aphides. Leur
bouche obtuse et large peut bien s'appliquer à un tissu, mais elle ne
possede pas d'organe capable de pénétrer dans ce tissu pour en pomper
le suc. Il est probable que, pour se nourrir, la larve entame avec une
pointe chitineuse extrêmement fine, qui devient visible si l’on se sert
d’une solution de potasse, une cellule de la surface interne de la galle,
et qu'en suite de cette blessure, il sort une minime gouttelette ».

Ce qu'on distingue le plus nettement, ce sont les pièces chitineuses
qui forment la charpente de la tête. Elles existent chez toutes les larves
de Cécidomyies, mais elles sont plus ou moins fortement chitineuses,
Lantôt d’un brun noir, d'autres fois presque hyalines, le plus souvent
jaune clair; elles sont aussi plus ou moins longues, selon les espèces.
Toutes sont situées dans l'épaisseur des tissus, ou au moins sous-cuta-
nées. La principale de ces pièces à la forme d’un fer à cheval ayant
son ouverture en arrière (pl. 26, lig. 1-3, a).

A la naissance de la tête, les deux bras de celte pièce qui sont situés
dans la profondeur des tissus, paraissent reliés lun à Pautre par une
tige transversale et arquée, visible par transparence à Ja face supérieure
de la tête {pl. 26, fig. 4, b; et 3, b); cette pièce en arc émet de chaque

(139) Cecidomyides d'Europe et d'Algérie. 315

côté, en arrière, une tige qui va rejoindre l'extrémité de la pièce en
forme de fer à cheval (pl. 26, fig. 4, e; et 3, c) et une autre en avant
aboutissant également à la même pièce (pl. 26, fig. 1-3, d). Sur le
dessus de la tête se voit une tige longitudinale et médiane ayant son
origine à l'arc qui relie supérieurement les deux branches de fer à che-
val (pl. 26, fig. 4, e). Sur le dessous de la tête, apparait de chaque
côté une tige longitudinale et latérale, insérée à sa base au fer à cheval
et convergeant l’une vers l’autre en se rendant au sommet de la tête
(pl. 26, fig. 2-3, f). Cet appareil sert probablement à faire rentrer la
tête dans le second segment,

Indépendamment de ces pièces, lon voit encore sur la face infé-
rieure de la tête un tube chitineux (pl. 26, fig. 2-3, g) qui s'étend aussi
loin que les deux tiges longitudinales et latérales, et est, chez cer-
taines espèces, distinet jusqu’à l'extrémité de la tête ; c’est l’étui de loe-
sophage, car il est traversé par l’oesophage et par le canal communi-
quant avec la glande salivaire. Enfin une autre pièce, encore plus
rapprochée de la face inférieure de la tête, semble composée de deux
tiges parallèles et juxtaposées, s'appuyant par leur base sur le fer à
cheval et se touchant à leur extrémité où chacune parait être munie
d’un minime croc (pl. 26, fig. 5, m; et 2-3, h). Entre elles, à leur base,
est un petit appendice en forme de ligule.

L’extrémité de la tête semble faire office de ventouse et parait plus
ou moins distinctement trilobée, étant vue de dessous. L'orifice buccal,
que je n'ai jamais pu découvrir, doit se trouver là, parce que le tube
ou étui de æsophage est parois visible jusque-là, et parce que j'en ai
vu sortir quelquefois une très petite bulle d'air; il est entouré de pa-
pilles réparties comme le montre la fig. 4 de la planche 26.

2° Œsophage, estomac et intestin (pl. 30, fig. 3). Après avoir traversé
l'étui thoracique dont nous venons de parler, l’œsophage s’élargit au
3° segment et forme un jabot ovoidal; à ce jabot fait suite un grand sac,
rempli de sève verte, jaunâtre ou rouge et qui s'étend jusqu’au 5° ou
6e segment abdominal, occupant sur son parcours environ les deux
tiers de la largeur du corps : c’est lestomac ou le ventricule chylifique.
L'intestin qui fait suite à l'estomac se replie chez beaucoup d'espèces
deux fois sur lui-même, la 4e fois par en haut, la 2 par en bas et dé-
bouche dans la grande ampoule rectale qui aboutit à la fente longitudi-
nale de l'anus. Chez les larves mycophages, la première partie de l’in-
testin est beaucoup plus grosse que la suivante, parfois, par exemple
chez Mycodiplosis Reaumuri Kielf., aussi grosse que Pestomae, dont elle
ne se distingue que de Ja facon suivante : 4° elle en est séparée par un

316 À. Kierren. (136)

étranglement très étroit, où aboutissent les deux tubes de Malpighi;
2 tandis que l'estomac est rempli de globules très distincts, souvent
colorés en rouge, cette première partie de l'intestin renferme une ma-
livre dans laquelle on ne distingue plus de globules et dont la couleur
est toujours plus sombre que celle des globules contenus dans l’es-
tomac; cela est surtout frappant quand on examine à la loupe des
larves de Mycodiplosis Reaumuri non encore arrivées à leur maturité.

Selon N. Wagner, l'intestin de Miastor metraloas Mein. ne décrit
qu'une boucle unique, et l'estomac est divisé en son milieu, par un
rétrécissement, en deux parties, dont la première porte de chaque côté,
immédiatement après le jabot, un appendice en forme de sac, appelé
par Wagner « appendices de l'estomac ». Selon le même auteur, tout
le conduit intestinal serait traversé par un tube plus étroit, assez droit
au commencement, puis en forme de ligne sinueuse dans le second
estomac, et faisant probablement office de muqueuse. Je n'ai jamais
constaté l'existence d’un pareil tube interne, pas plus dans le genre
Miastor que chez les espèces cécidogènes.

3° Glandes (pl. 30, fig. 3, e et fig. 6). Prèsde son origine, l’œsophage
recoit un canal étroit qui se bifurque bientôt pour aboutir à deux
glandes de forme cylindrique, plus ou moins longues selon les espèces,
On les aperçoit assez facilement, par exemple chez Contarinia Steini,
car outre qu'elles sont relativement grosses, atteignant le tiers de la
largeur de lestomac, elles sont remarquables par leur contenu qui
semble composé de très grandes cellules, arrondies, avec une sorte de
noyau au milieu; entre ces cellules que l’on peut remarquer depuis le
3° segment somatique jusque vers le milieu de l’estomae, se voit, mais
difficilement, le canal glandulaire qui, après avoir traversé ce renfle-
ment, se réunit au canal glandulaire situé de l'autre côté de l’æsophage;
le canal unique, qui est ainsi formé, aboutit à l’œæsophage dans la partie
postérieure de la tête. D’après les observations de M. P. Marchal, le
renflement des glandes, avec les volumineuses cellules, ne s'étend
chez Mayetiola destructor Say que depuis le cerveau jusqu’en avant du
jabot; à partir de cet endroit, la glande ne se compose plus que d’un
long tube dont la cavité se trouve interrompue par des trabécules pro-
toplasmiques; ces deux glandes s’allongent à mesure que la larve s’ac-
croit et finissent par arriver à la partie postérieure du corps.

N. Wagner ©t P. Marchal considèrent ces glandes comme étant les
glandes salivaires ; Pagenstecher, au contraire [568, p. 15], veut y voir
des glandes séricigères, et considère comme glandes salivaires ce que
Wagner appelait les « appendices de l’estomac »,

(137) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 317

4° Tubes de Malpighi. Immédiatement après son origine, l’intestin
reçoit de chaque côté un tube de Malpighi dont le contenu est ordinai-
rement verdâtre ou jaunâtre. Ces deux tubes forment avec l'intestin
un T dont ils forment les branches horizontales, tandis que l'intestin
en forme la branche verticale; à l'extrémité de la branche horizontale
du T ainsi formé, chaque tube de Malpighi décrit une boucle et va s’é-
tendre, sous forme de ligne sinueuse, jusqu’à l'extrémité postérieure
de l'intestin. Telle est du moins la forme ordinaire de ces tubes. Pour
la larve de Miastor metraloas, N. Wagner [790, p. 518] et Pagenste-
cher [568, p. 407-408] distinguent deux paires de tubes de Malpighi,
de longueur à peu près égale et aboutissant toutes deux à l’origine de
l'intestin.

IV. SYSTÈME NERVEUX (pl. 30, fig. 8, b et c). — D’après les observa-
tions de N. Wagner [790, p. 520, fig. 9], confirmées par Pagenstecher,
le système nerveux de la larve de Wiastor metraloas se compose de
1% ganglions qui ne correspondent nullement aux quatorze segments du
corps. Le plus grand de ces ganglions, le cerveau, est situé dans la
moitié postérieure du 4° segment thoracique et dans la moitié an-
térieure du segment suivant; il est le plus distinct de tous les gan-
glions et est surtout bien apparent chez Bremia, Mycodiplosis et Conta-
rinia; il est formé de deux moitiés accolées dans le sens de leur
longueur; de sa partie antérieure part, de chaque côté, une paire de
gros neris qui forment au bord antérieur du segment prothoracique
un gros renflement cordilorme (pl. 26, fig. 1, r); deux nerfs relient
celui-ci à chacun des palpes, et deux autres aux pièces chitineuses
des parties buccales. Sur le dessus de ce renflement cordiforme ou sac
céphalique, par conséquent à une grande distance du tissu cutané,
apparaissent les deux taches oculaires brunes, dont la forme a été

indiquée. Ces deux taches consisteraient, selon N. Wagner, Pagens-
techer, etc., en deux petits sacs remplis d’un pigment brun, enchâässant
dans leur concavité une masse réfringente comparable à un cristallin
globuleux. « Je n’ai réussi que sur peu d'exemplaires à découvrir le
cristallin globuleux », dit Wagner, et Pagenstecher dit de même que
«ce cristallin est peu distinct ». Pour moi, j'avoue que je n’ai jamais
pu le découvrir. Selon M. P. Marchal [446, p. 16 et 28], ces taches,
d'abord accolées l’une à l’autre par leur partie convexe, « s’écartent oTa-
duellement, et, pendant la transformation de l’Insecte , elles deviennent
latérales pour se placer ensuite chez la nymphe au niveau du bord infé-
rieur des yeux... Chez la nymphe, les deux yeux portent à leur partie
inférieure une tache noire allongée transversalement qui, ainsi que j'en

*
318 J.-J. KIEFFER. (438)

ai eu la preuve en étudiant le développement des histoblastes cépha-
liques, n’est autre chose que là tache oculaire de Ja larve. Cette tache
oculaire opère une migration pendant la 3° phase larvaire : d’abord
située sur la ligne médiane et dorsale du sac céphalique, elle s’écarte
eraduellement de sa congénère pour devenir latérale, puis ventrale : au
moment de la dévagination du sac, elle accompagne le disque oculaire
auquel elle se trouve fixée et se trouve projetée au dehors »,

V. SYSTÈME ADIPEUX. — On le voit sous la forme de deux rangées
latérales de gros lobes, correspondant aux segments du corps, et d’une
autre rangée qui est médiane et ventrale. Nous verrons, en traitant de
la pædogénèse, quel rôle lui ont attribué plusieurs auteurs.

3° Physiologie deslarves de Cécidomyies.

Nous traiterons ici les questions suivantes : F, mues et changements
des larves pendant leur développement; If, modes de locomotion :
IT, influence du milieu ambiant: IV, pædogénèse. Quant à la façon dont
les larves se nourrissent, nous en parlerons dans un article à part.
sous le nom de Biologie.

1. MUES ET CHANGEMENTS DES LARVES. — En étudiant le développement
de la larve de Mayetiola destructor, M. P. Marchal y distingua trois
formes différentes et successives, la première correspondant à la phase
de migration, la seconde à celle de nutrition et de croissance, et la troi-
sieme qu'il appelle phase intrapuparienne. On peut distinguer ces
trois stades chez toutes les larves de Cécidomyies ; nous les adoptons
donc ici, en changeant toutefois le nom de la troisième phase, ou
phase intrapuparienne, en celui de phase de maturité.

1° Phase de migration. Dans l'étude que nous venons de citer,
M. Marchal décrit ainsi cette première phase : « La larve éclôt, d’après
les auteurs, vers le 4° jour; mais le temps nécessaire pour son déve-
loppement est en réalité très variable et peut être beaucoup plus long
si la température est basse. L’œuf est disposé de telle sorte que la tête
de la larve soit naturellement dirigée du côté de la racine. Cette larve,
observée par Lindeman, mais décrite d’une façon inexacte et incom-
plète, est différente de la larve que nous allons trouver tout à l'heure
lixée sur la tige et correspondant à la deuxième forme. Elle a, au
début, une taille à peine supérieure à celle de l'œuf; elle présente
13 segments dont le 4e constitue la tête; celle-ci se distingue principa-
lement de la tête de Ja seconde forme larvaire par la présence de deux
orcillettes charnues triangulaires légèrement incurvées inférieure-

(139) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 319

ment, placées de chaque côté el comparables à de courts tentacules ;
le bord antérieur prébuccal est trilobé, et en dessous l’on distingue la
bouche sous forme d’une petite fente triangulaire. Le dernier segment
est légèrement échancré postérieurement, et chacun des deux lobes
ainsi formés porte quatre petites papilles sétiformes.

Grâce à la transparence de la larve, on apercoit un certain nombre
d'organes internes. Ce sont d’abord les taches oculaires. On voit en-
core par transparence le système adipeux formé dans chaque segment
du corps de deux masses opaques placées une de chaque côté et irré-
gulièrement lobées. Le tube digestif se présente sous la forme d’un
grand sac jaune, de chaque côté duquel se trouve une masse ovoïde
allongée de grosses cellules hyalines qui constituent l’ébauche des
glandes salivaires. Des granules de pigment jaune... se trouvent ré-
partis par tout le corps auquel ils communiquent sa couleur jaune.
A l'extrémité postérieure du corps on voit deux troncs trachéens laté-
raux qui aboutissent à deux stigmates placés à la partie postérieure
de lavant-dernier segment.

La larve ainsi constituée descend en rampant le long de la feuille
aussitôt qu'elle est éclose ; elle arrive à la base de la feuille, s'engage
ensuite entre la gaine foliaire et la lige et va se fixer au niveau du
nœud qui correspond à cette feuille, c’est-à-dire aussi loin qu’elle
peut aller sans rencontrer d’obsiaele. Une certaine humidité est néces-
saire pour que cette migration s'opère dans de bonnes conditions.
Enock ail, avec raison, observer que beaucoup de larves meurent
pendant leur voyage par une trop grande sécheresse. Arrivée au nœud
qui se trouve placé au-dessous d'elle, la larve se fixe la tête en bas
par son extrémité buccale et commence à se nourrir: elle restera
dès lors ainsi fixée par sa bouche comme par une ventouse, en hu-
mant les sucs nourriciers, dans une immobilité à peu près complète,
jusqu’à ce qu’elle ait atteint sa taille définitive.

A peine s’est-elle fixée, qu’elle opère une première mue, dont le
résultat est de faire apparaitre la seconde forme larvaire; on peut
trouver facilement de jeunes larves qui se trouvent encore enveloppées
de la peau formée par cette mue »,

Ces observations s'appliquent à la généralité des larves de Céci-
domyies. Nous devons y ajouter cependant les remarques suivantes.
Pour léclosion des larves, Winnertz [816, p. 194] dit avoir observé
qu'elle avait lieu au bout de quelques heures quand la température
était élevée. Dans des œufs pondus par Contarinia pulchripes Kielf..
je vis apparaître l'embryon au second jour; cet embryon ne remplis-
sail pas tout l'œuf, mais les deux extrémités de celui-ci montraient

320 PJ. Kigrrer. (140)

un vide assez considérable ; la segmentation était encore peu distincte,
de sorte que l’on ne pouvait compter le nombre de segments; une
tache vitelline sombre et ass: grande se remarquait au milieu. L'éclo-
sion eut lieu le quatrième jo; la larve avait alors les mêmes dimen-
sions que le corps de l'œuf; la segmentation, la tête avec les palpes
bi-arliculés, la tache oculaire et les verrues spiniformes étaient très
distinctes ; les stigmates et les papilles terminales apparaissaient mais
peu distinetement; quant aux trachées, je n’en ai pas vu trace. Ganin
dit de la larve d'Hétéropézine qu'il a observée, qu'après sa sortie de
l'œuf elle est sans stigmates et sans trachées. Pour les larves fraiche-
ment écloses de Rhopalomyia palearum Kielf., je n’ai pu trouver trace
des trachées ni des stigmates, à l'exception des stigmates postérieurs,
situés comme chez les larves adultes, au huitième segment abdominal,
gros et proéminents, munis de deux soies plus longues que les soies
des papilles dorsales et latérales du même segment; outre les papilles
latérales et dorsales, on voit encore les papilles terminales; comme
toutes ces papilles ne sont visibles qu’à cause de la minime soie qu'elles
portent, il faut en conclure que les autres papilles non sétigères, ainsi
que chez les larves dépourvues de soies à l’état adulte, par exemple
Contarinia pulchripes, sont déjà présentes dès le premier stade, mais
qu'on ne peut les découvrir à cause de leur extrême petitesse. Les
espèces qui auront plus tard un tégument cutané offrent déjà quel-
ques indices des verrues cingentes dans cette première phase.

Quant aux deux « oreillettes charnues et triangulaires » observées
par Lindemann et Marchal, et considérées par le premier comme « des
crochets qui servent à la locomotion de la larve quand elle se rend de
la feuille à la gaine », ne seraient-elles pas la première forme des
palpes? M. Marchal n’en dit rien, mais la figure qu’en donne Linde-
mann autorise à le croire, puisque ces oreillettes ou crochets sont
situés à la place des palpes. En tout cas je n’ai jamais rien vu de sem-
blable. J'ai observé des larves fraichement écloses et appartenant aux
genres Dasyneura, Rhopalomyia et Contarinia ; jy ai toujours trouvé
deux palpes bi-articulés. Pour bien des espèces il est du reste facile
de se procurer des larves pendant la période de migration, si l’on se
rappelle, comme nous l'avons dit plus haut, que les femelles pondent
même sur la paroi du bocal d'observation; si les œufs sont fécondés
on obtiendra bientôt les petites larves de la première phase, qui com-
menceront leur migration. Quant au motif de cette migration, nous
en parlerons plus loin, en expliquant la formation de la galle de
Mikiola fagi Hart.

2° Phase de nutrition et de croissance. Pendant cette phase, la

(141) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 321

larve subit probablement une ou plusieurs mues, parce qu’elle est
encore loin d’avoir atteint sa taille définitive. J'ai bien remarqué, pour
Contarinia pulchripes, quelques peaux provenant d’une mue et situées
à proximité d’un amas de petites larves, mais je n'ai pas pu recon-
naître si ces peaux provenaient de la première mue ou d’une mue
ultérieure. Les verrues cingentes, dont on voyait à peine des traces
dans la phase précédente, apparaissent maintenant en règle générale,
d'une façon distincte, à moins que la larve ne doive demeurer lisse ;
elles sont néanmoins encore moins proéminentes et moins rapprochées
que dans la troisième phase; les stigmates et les trachées sont toujours
visibles. Chez certaines espèces, nous trouvons des particularités qu’il
faut mentionner ici. Ce sont de nouveaux organes qui se présentent
et qui disparaissent à la troisième phase, ou bien certains organes
revêtiront une forme qu'ils n'auront plus à leur phase de maturité.

A. Stigmates. Chez Arnoldia cerris Koll., homocera H. Lw., Szepli-
getii Kieff., etc., les stigmates des jeunes larves sont conformés comme
l'indique la figure 42, pl. 31; ils sont relativement grands, bruns et bi-
furqués ; au centre de la bifurcation, l’orifice du tube apparaît sous forme
de petit mamelon. La dernière paire de stigmates offre une conformation
très différente de celle des précédentes; le dessus de l’avant-dernier
segment somatique porte de chaque côté un appendice conique, brun,
lisse et dirigé un peu obliquement en dedans ; c’est en dessous de la
pointe de ces prolongements, au côté interne, que se trouve l’ouver-
ture du stigmate (pl. 31, fig. 11). Plus tard, quand la larve est
adulte et qu’elle est pourvue d’une spatule, les stigmates ont la forme
ordinaire et les appendices stigmatifères ont disparu.

D’autres larves, par exemple celles de Braueriella phillyreae Fr. Lw.
et de Stefaniella atriplicis Kieff., ont à l’état jeune le bord terminal des
stigmates armé de trois appendices filiformes légèrement incurvés en
dedans (pl. 29, fig. 6-7).

B. Appendices thoraciques. La jeune larve de Wikiola fagi Hart.,
au moment où les galles commencent à se montrer, c’est-à-dire vers
la mi-mai, offre au second segment thoracique, de chaque côté, en
arrière des papilles pleurales, un grand appendice d’un brun clair,
cylindrique, aminci au bout, recouvert dans sa moitié terminale de
larges verrues terminées par une pointe; ces deux appendices attei-
gnent environ la longueur du segment (pl. 31, fig. 13). Quand la
larve est adulte, on ne trouve plus trace de ces appendices, dont le
rôle demeure énigmatique.

C. Verrues spiniformes. La plupart des larves ont à l'état jeune,
Ann. Soc. Ent. Fr., LxXIX, 1900. 21

329 * J.-J. KiEFFER. (142)

certaines même à leur sortie de l'œuf, les verrues spiniformes dis-
linctes et dans le même nombre de séries qu'à l’état adulte, Chez
Miastor hastatus KiefT. il en est autrement. Les jeunes larves, à leur
sortie du corps d'une larve prolifère, ont, ainsi que cette dernière,
onze séries de verrues spinilormes sur le dessous (depuis le segment
prothoracique jusqu’au pénultième segment somatique), comme cela
est le cas pour les Cécidomyines, et dix sur le dessus (à partir du
premier segment thoracique jusqu’à l’antépénultième somatique),
comme chez plusieurs genres de Cécidomyines, par exemple Campto-
myia Kiel. En avril, les larves adultes, reconnaissables à leur spa-
tule et à leur taille plus petite, n’ont plus que huit séries de verrues
spiniformes sur le dessous (à partir du troisième segment thoracique
jusqu'à l’'antépénultième somatique) et sept seulement sur le dessus
(‘du 3° segment thoracique incl. à l’antépénultième somatique exel.).

D. Plaque dorsale (pl. 26, fig. 6). Chez les jeunes larves de Schi-
zomyia galiorum Kieff., nigripes Fr. Lw.. liqustri Rbs., tami, n. sp.
et phillyreae, n. sp., on voit au pénultième segment somatique une
plaque dorsale, plus ou moins chitineuse, plus large que longue,
échancrée en arc ou bilobée, située entre les deux stigmates et tenant
lieu des deux papilles sétigères dorsales de ce segment, car ces papilles
font défaut ici, tandis qu'elles sont visibles sur les autres segments.
Quand la larve fait rentrer le segment anal armé de ses deux crochets
chitineux, on voit cette Jamelle dépasser l’extrémité postéricure du
corps. Chez celle de S. phillyreae elle est couverte de spinules et,
ainsi que la majeure partie du segment anal, fortement chitineuse; par
contre, cette larve était dépourvue de verrues cingentes et de verrues
spinitormes distinctes. La larve de S. nigripes a la plaque dorsale pres-
que hyaline et lisse; quand elle à atteint une taille de 4 millimètre, elle
est encore munie de cette plaque bilobée, mais dépourvue de verrues
cingentes ; quant au reste, elle ne diffère de la larve adulte que par
l'absence de la spatule.

E. Transformation des papilles terminales et dutégument
cutané. Tandis que les larves de Schizomyia ont les crochets qui re-
présentent les papilles terminales très bien développés dès la seconde
phase, celles des Clinodiplosis ont au contraire pendant leur phase de nu-
trition, avant l'apparition de la spatule, six des huit papilles terminales
très petites, coniques et hyalines ; ce n’est qu'avec l'apparition de la spa-
tule que ces papilles terminales se présentent sous forme d’appendices
coniques, plus ou moins recourbés et chitineux ; quant aux deux papilles
externes et inférieures, elles sont pourvues d’une longue soie dès la se-

e-

(143) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 323

coende phase. Il est à remarquer encore que le tégument cutané subit
une transformation après la seconde phase, chez certaines espèces du
même genre Clinodiplosis. En effet, le dessus et les côtés du corps
paraissent couverts, pendant la phase de nutrition, de minimes verrues
hémisphériques, écartées les unes des autres et offrant ainsi l’appa-
rence d'une granulation éparse et fine; avec l'apparition de la spatule,
cette granulation fait place à des écailles de grande dimension, appli-
quées sur toute leur surface inférieure, ordinairement de 1 à 2 fois
aussi longues que larges, et offrant sur leur surface supérieure une
fine granulation tantôt groupée en leur centre, tantôt alignée le long
de leurs bords.

Vers la fin de cette seconde phase, le tégument cutané a atteint tout
son développement. La spatule commence à se dessiner; c’est d’abord
l'extrémité libre qui devient visible sous forme d’un ou de plusieurs
lobes hyalins, puis toute la partie élargie apparait et se chitinise, alors
que l’on ne voit encore aucune trace de la tige; enfin celle-ci se des-
sine, puis se chitinise et la larve est arrivée à sa troisième phase.

3° Phase de maturité. Dans ce stade, la larve est munie d’une spa-
tule entièrement développée, à moins qu’elle ne doive en demeurer
toujours dépourvue. La croissance est terminée; l’insecte cesse de se
nourrir et se prépare à la métamorphose. A cet effet, les larves qui
étaient fixées à la plante nourricière la tête en bas, et qui doivent se
métamorphoser au même endroit, par exemple les Mayetiola Kieff.,
Rhabdophaga rosaria H. Lw., rosariella Kielf., clavifeæ Kieff., puloëni
Kieff., Oligotrophus taxi Inchb., juniperinus D.G., Panteli Kieff., etc.,
se retournent dans leur puparium ou dans leur cécidie, de façon à
avoir la tête en haut. Celles de Rhopalomyia palearum Kieff., florum
Kieff., etc., opèrent ce retournement bien qu'elles soient dépourvues
de spatule. Quant à celles qui sont renfermées dans une cécidie entiè-
rement close et non déhiscente à la maturité, elles opèrent le travail
de perforation et préparent le trou de sortie à la nymphe. C’est pen-
dant ce stade enfin que s’observe la période de repos dont nous avons
parlé en traitant de la Nymphose.

II. Mopes DE LOCOMOTION. — Toutes les larves de Cécidomyies peuvent
se déplacer en rampant. Néanmoins les espèces renfermées dans une
salle entièrement close, par exemple Rhabdophaga saliciperda Duf., Pier-
rei Kieff., etc., ne font guère usage de cette faculté en dehors de leur
valle; elles demeurent habituellement couchées à l'endroit où on les
a déposées, sans essayer de fuir, comme le font les autres. Quand une

larve se meut sur une surface plane, par exemple sur une lame de

324 J.-J. KiEFFER. (144)

verre, voici ce que l’on peut observer. Les trois derniers segments
somatiques subissent d'abord un mouvement de traction en avant,
par suite duquel ils se raccourcissent, s’élargissent et rentrent plus ou
moins l’un dans l’autre, de façon que la partie antérieure d’un seg-
ment, généralement armée de verrues spiniformes, passe par-dessus la
partie postérieure du segment précédent, laquelle est toujours inerme ;
c’est ce qui a trompé le professeur de Kasan, quand il a écrit que la larve
de Miastor metraloas Mein. avait les verrues spiniformes au bord posté-
rieur des segments. Pendant ce mouvement de traction, la tête et la partie
antérieure du corps sont appliquées au plan de position ; on comprend
aisément de quel secours sont, pendant cette traction, les verrues spini-
formes du dessous des segments antérieurs. L’antépénultième segment
ne se raccourcit pas autant que les deux autres, mais assez cependant
pour imprimer au segment qui le précède un mouvement d’impulsion
en avant, après quoi il se fixe solidement au moyen de ses verrues
spiniformes. Ce mouvement d’impulsion se communique d’anneau en
anneau jusqu’à la tête, laquelle se relève et est comme projetée en
avant.

Quand la larve se trouve entre les fibres de l'écorce, les verrues
spiniformes dorsales peuvent également lui servir de points d'appui
pendant ce double mouvement. Nous croyons donc comprendre ainsi
le rôle de ces organes : au moment de la traction, les segments qui ne
la subissent pas se servent de leurs verrues spiniformes dirigées en
arrière, ou, à leur défaut, des verrues cingentes — je ne connais au-
cune larve qui soit dépourvue des unes et des autres — pour donner
des points d'appui au corps, et de leurs papilles ventrales ou pleurales
ou des pseudopodes, pour se fixer solidement. Quant aux papilles dor-
sales et latérales, elles semblent être surtout des organes du toucher,
aussi sont-elles souvent munies d’une soie tactile.

Outre ce mouvement de reptation, beaucoup d'espèces possèdent
encore la faculté de sauter. A cette fin, la larve se courbe en ramenant
l'extrémité du segment anal jusqu’à la face ventrale du segment pro-
thoracique et forme ainsi un arc perpendiculaire au plan de position,
puis, en se débandant comme un ressort tendu, elle est projetée à une
distance de quelques centimètres, rarement de plus d'un décimètre.
Ce fait est connu depuis longtemps, puisque Réaumur le mentionna
déjà en 1737 pour la larve de Contarinia pisi Winn. [587, p. 301-303].
M. Giard chercha à l'expliquer de la facon suivante : « Deux crochets
subcornés, où tout au moins des papilles chitineuses, existent chez
toutes les larves sauteuses de Diplosis; Ja larve les ramène en avant
de Janus, quand elle se recourbe ventralement pour se préparer au

(145) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 329

saut. D'autre part, les deux lames saillantes de l’extrémite bifurquée
de la spatule viennent prendre un point d'appui contre ces papilles,
puis lâchent prise et le corps se débandant comme un ressort tendu,
la larve est projetée au loin « [171, p. 82]. Il est à remarquer que
toutes les larves de Cécidomyies sauteuses sont munies d’une spatule
et, au segment anal, de deux crochets, rarement de deux papilles coni-
ques et chitineuses. On connaît celte faculté pour le genre Contarinia
Rond., si riche en espèces, et pour Bremia aphidimyza Rond., aux-
quels j'ai ajouté les genres Xylodiplosis Kielf. et Endaphis Kieff., tous
du groupe des Diplosides; je puis y ajouter encore quelques représen-
tants du genre Clinodiplosis Kieff. qui possèdent cette faculté, mais à
un degré bien inférieur, pouvant à peine se projeter jusqu’à la distance
d’un centimètre, et cela encore après bien des essais stériles; dans le
genre Wycodiplosis, une espèce, M. boleti Kieff., se projette avec la
plus grande vivacité à la distance d’un décimètre et au delà. Dans le
groupe des Épidosides, nous avons à signaler les genres Camptomyia
Kieff. et Winnertzia Rond. ; enfin dans la sous-famille des Lestrémines,
nous devons mentionner une larve dont le genre m'est inconnu, et
dont nous avons recu quelques exemplaires de M. Paul de Peyerim-
hoff, ce qui porte donc à neuf le nombre des genres comptant des re-
présentants parmi les larves sauteuses.

Cette faculté de sauter a été observée rarement chez d’autres Di-
ptères. En dehors de la famille des Cécidomyies, on ne la connaît que
pour deux espèces, à savoir Piophila casei L. et Liriomyza urophorina
Mik.

III. INFLUENCE DU MILIEU AMBIANT SUR LE DÉVELOPPEMENT DE LA
LARVE. — Comme il a été dit plus haut pour les nymphes, deslarves de
Cécidomyies peuvent vivre un certain temps, et même se métamor-
phoser, quand elles ont été plongées dans l’eau. Cette observation, que
j'ai publiée en 1894, vient d’être confirmée par M. Rübsaamen, qui
écrit que les larves de Thurauia aquatica Rbs. passent une partie de
leur existence dans l’eau. La même chose a lieu pour Miastor subter-
raneus Karsch, selon R. Schneider. J’ai également observé, dans une
tourbière, des larves de Lestrémines d’un genre inconnu, vivant sous
les gaines d’Eriophorum qui plongeaient dans l’eau. Mais l'exemple le
plus frappant nous est fourni par Cecidomyia vaccinii KielT., dont les
galles se trouvent dans les tourbières et dont les larves sont obligées de
se réfugier parmi les Sphaignes toujours imbibées d’eau. N'ayant pu
réussir à obtenir l’éclosion de cette espèce, je mis plusieurs larves dans
de l’eau, après leur sortie de la galle, c’est-à-dire au mois de juin; le

326 3. Kaerren. (136)

12 février suivant, par conséquent au bout de huit mois, je les sortis
de là; elles commencèrent à se mouvoir, puis à se déplacer, l’une
d'elles parvint jusqu’à la métamorphose.

Elles sont de même capables de supporter les plus grands froids. Un
pot à fleurs contenant de la terre dans laquelle des larves de Perrisia
cardaminis Winn. s'étaient ensevelies, fut exposé à une température de
— 25°; cela n’empècha pas ces larves d'arriver plus tard à leur méta-
morphose, Quant à l'influence de la sécheresse, il en a été question
dans les conditions de la nymphose.

Winnertz fait la remarque suivante [816, p. 197] : « J'ai constaté
qu'après un orage, certaines espèces, telles que cardaminis W.,
saliceti W., terminalis H. Lw., acrophila W. et pavida W. se mon-
traient extrèmement agitées. Toutes celles qui s'étaient enfouies en
terre, en sortirent de nouveau à la tombée de la nuit et rampèrent de
tous côtés avec une grande vivacité et une apparente inquiétude. Je les
recueillis dans des soucoupes que j'avais placées sous les pots à éclo-
sion, et, le lendemain, lorsque je les remis sur la terre de ces pots,
elles s’y enfoncèrent de suite ». Mes observations ne confirment pas
celles de Winnertz sur ce point. Mais j'ai remarqué que pour certaines
espèces, notamment pour Perrisia cardaminis Winn. et Oligotrophus
fagicola Kieff., les larves sortaient de terre et se mettaient à voyager
après chaque arrosage.

IV. PÆDoGÉNÈèse. — Un certain nombre d’'Hétéropézines, toutes appa-
rentées entre elles et remarquables par leurs ailes à nervures simples
et ordinairement incomplètes, pondent seulement quatre à cinq œufs.
Il semblerait d’après cela que leur progéniture devrait être moins
nombreuse que celle des autres espèces, et pourtant c’est tout le con-
traire qui à lieu. La dimension de leurs œufs qui atteignent presque
la longueur de leur abdomen est déjà une particularité remarquable.
En suivant le développement de cet œuf, on verra qu’il donnera nais-
sance à une larve relativement très grande, presque transparente et
pourvue d’un double ovaire. Bientôt cette larve paraît considérable-
ment grossie; eu l’observant alors au microscope, on remarquera avec
étonnement qu'elle renferme un grand nombre d'œufs. Ceux-ci sont
d'abord sphériques, puis, à la maturité, ovalaires, ou en ellipse, et
alors avec un vitellus commencant à se former au centre.

Les uns s’atrophient et n'arrivent pas à leur développement; les
autres, au nombre d'environ 18-20 dans une espèce, de 7 à 9 seule-
ment dans une autre, de 30 dans une 3°, renferment chacun à sa
maturité une petite larve, qui ressemble en tout à la larve mère. Celle-

(147) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 327

ci ne donne plus alors que de faibles signes de vie. Au bout de deux
ou de trois jours les jeunes larves brisent l'enveloppe de l'œuf et se
meuvent en liberté dans le corps de la larve mère, lequel leur sert de
nourriture ou se décompose; au bout de peu de temps il n’en reste
plus que la peau et les trachées, de sorte que les jeunes larves peuvent
la briser facilement et en sortir. Voilà done une seconde génération pro-
venant des larves de la première et comprenant environ 72 à 90 in-
dividus dans une espèce, 28 à 45 dans l’autre, de 120 à 150 dans la 3°.
Les larves de cette seconde génération se multiplient de la même
facon que la première, mais sans en atteindre les dimensions. Ces
générations se succèdent ainsi pendant l'automne, l'hiver et le
printemps, de telle sorte cependant que les larves sont toujours plus
petites à mesure que la génération est plus éloignée de la première.
C'est ce qui explique comment on peut trouver, sous Pécorce de
branches mortes, ou de troncs d'arbres desséchés ou dans des souches
pourries, de véritables amas de larves, formant parfois une couche
blanche et uniforme, d’une assez grande étendue, là où une seule
femelle a déposé ses quatre ou cinq œufs. L'auteur de cette découverte
évalue à une centaine de milles le nombre des larves vivant en mai,
c’est-à-dire, après de nombreuses générations, dans une souche pour-
rie. Arrivées enfin au terme de ces générations, les larves cessent de
produire des œufs, la spatule (!) qui faisait défaut jusque-là, apparait
et les insectes subissent leur transformation en nymphe, pour se
réveiller bientôt comme insectes ailés, les uns mâles, les autres fe-
melles. Après la fécondation des femelles, la série des générations
issues des larves recommence.

Ce curieux mode de reproduction durant ainsi même pendant la
mauvaise saison, c’est-à-dire pendant que les larves des autres espèces
sont au repos, a reçu le nom de pædogenèse (rat, enfant, yéveocis, gé-
nération). Découvert en 1861 par Nic. Wagner, professeur de Zoo-
logie à Kasan, ce fait parut tellement incroyable que Ch. de Siebold
auquel Wagner avait envoyé dès 1861, son mémoire destiné à la pu-
blicité, ne put se résoudre à l’insérer dans son Journal de Zoologie
scientifique qu’en 1863. Un professeur de Copenhague, Meinert, fut
le premier à confirmer la découverte de Wagner, en 1864, et décrivit
le Diptère sous le nom de Miastor metraloas ; plus tard, le même auteur
publia encore deux espèces se reproduisant par pædogénèse, à sa-

1. Les trois larves munies de spatule, que Wagner trouva dans une souche
de Sorbier, ne renfermaient pas d'œufs; comme elles étaient plus grandes
que les autres, elles pouvaient appartenir à une autre espèce.

328 Ï.-J. Kigrrer. (148)

voir, Oligarces paradorus Mein. et Pero fasciata Mein. De nombreuses
et minutieuses observations ont été faites depuis sur des larves à
pædogénèse, par des hommes compétents, tels que Ch. de Siebold,
Ganin, professeur à l’Université de Charkow (larves vivant dans des
balayures composées de matières organiques en décomposition),
Pagenstecher (larves observées dans du résidu de betteraves), Leu-
ckart, Mecznikoff, de sorte que ce fait reste définitivement acquis à
la science. J'ai fait la même observation sur les larves de Miastor has-
tatus Kieff. et similis Kieff. ; dans l’un et l’autre cas, la larve mère ne
renfermait, en novembre et en avril, que cinq à six jeunes larves,
dont deux ou trois avaient la tête tournée vers la tête de la larve
mère, les autres dans le sens opposé; toutes étaient presque aussi
grandes que la larve mère. On peut encore ajouter à ces espèces Fri-
renia tenella Kielf. et Leptosyna acutipennis Kieff. pour lesquelles je
n'ai pas observé les larves mères, mais l'abdomen de l’insecte parfait
renfermait seulement quatre ou cinq œuîis presque aussi grands que
lui, ce qui est le caractère des espèces se multipliant par pædogénèse.

Quant à l’évolution des jeunes larves dans le corps de la larve pro-
lifère, elle à trouvé autant d'explications différentes que d’observa-
teurs. Nous ne pouvons qu’exposer brièvement ces diverses théories.

Selon N. Wagner [790], l'œuf d’abord sphérique, puis ellipsoidal et
rempli alors d'un vitellus qui apparaît d’abord au centre, se forme
aux dépens des corps adipeux, et non point dans un ovaire.

Meinert pense également qu'il n’existe pas d’ovaire chez les lar ve
de Miastor metraloas et d'Oligarces paradozus, mais que les œufs des
larves qui doivent proliférer aussi bien que ceux de celles qui doivent
arriver à la métamorphose, sont formés de cellules semblables et unies
étroitement aux corps adipeux [482].

Pagenstecher [568] nie de même l'existence d’un ovaire chez ces
larves ; toutefois il croit que les œufs ne se forment pas aux dépens des
corps adipeux, mais aux dépens du sang.

Mecznikoff [473] admet un ovaire propre, distinct des corps adipeux,
dans lequel se forment les œufs, mais aux dépens des cellules po-
laires.

Ganin [202] arrive à la conclusion que les larves ne sont pas pro-
duites aux dépens des corps adipeux, mais qu'elles se forment d'œufs
qui se développent dans deux ovaires de forme ovoïdale, situés cha-
cun à la région du 11° segment, dans le tissu adipeux.

Leuckart enfin [355] se rapproche de l'opinion de Ganin. Pour lui,
les larves ne se forment pas aux dépens du tissu adipeux, comme le
croyaient N. Wagner et Meinert, ni d'œufs contenus dans deux ovaires,

PONS CN

(149) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 329

comme le disait Ganin, mais de germes pour lesquels il propose le
nom de pseudova, et qui se développent dans deux organes spéciaux
qu'il appelle « sacs à germes » (Keimstôcke).

Si l’on compare les différents modes de générations des insectes
entre eux, on arrive au résultat suivant :

1° Une larve produit d’autres larves qui lui sont semblables. PæÆpo-
GÉNÈSE.
A. Une larve munie d’organes sexuels, produit de jeunes larves,
sans cesser de vivre : Aphides.

B. Une larve peut-être dépourvue d'organes sexuels, meurt en
produisant de jeunes larves qui déchirent son corps pour en
sortir : Æétéropézines.

2° L'auteur de la génération est un insecte parfait,
A. Une femelle non fécondée pond des œuis fertiles. PARTHÉNOGÉ-
NÈSE.
a. Les œufs non fécondés produisent seulement des femelles.
Exemple : beaucoup de Cynipides.

b. Les œuis non fécondés produisent seulement des mâles.
Exemple : l’Abeille.

c. Les œufs non fécondés produisent des mâles et des femelles.
Exemple : certains Lépidoptères.

d. Les œufs non fécondés produisent des mâles et des femelles
dont l’œuf fécondé produira de nouveau une femelle parthéno-
génétique. GÉNÉRATION ALTERNANTE. Exemple : la plupart des
Cynipides gallicoles.

B. Une femelle non fécondée ne pond que des œufs stériles; en
d’autres termes l'œuf ne produit un être vivant que s’il a été
fécondé. GÉNÉRATION SEXUÉE. Exemple : les Cécidomyines et la
plupart des autres insectes.

4 Biologie des Larves des Cécidomyies.

D'après la conformation de leurs parties buccales, les larves qui
nous occupent ne peuvent que sucer des liquides, aussi ne trouve-t-on
jamais que des sucs dans leur tube digestif.

Selon les observations de Büsgen [57, p. 16] « la nourriture de la
larve de Mikiola fagi Hart. consiste en des matières sucrées et albu-

330 VI. KiRFrer. (150)
mineuses, car la présence de ces matières se prouve par le sulfate de
cuivre et la solution de potasse. Elle est formée par le tissu de la galle,
dont beaucoup de cellules renferment des grains de chlorophylle. On
ne trouve aucune trace d’excréments dans la galle; la larve semble
s'assimiler toute la nourriture qu'elle prend. La période de nutrition
dure plusieurs mois ».

Mais je ne puis admettre ce que Beyerinck écrit de la larve de Maye-
tiola poae Bosc. Selon lui, la jeune larve, fixée si étroitement au tissu
végétal qu'on peut à peine la détacher sans la blesser, se nourrirait
probablement par toute la surface inférieure de son corps et il exis-
terait ainsi un échange osmotique entre elle et la plante [24, p. 47].

D’après leur genre de vie, nous les distinguons en larves z00phages,
coprophiles et phylophages. Beaucoup d'espèces qu’on trouve dans les
endroits les plus divers, mènent un genre de vie encore inconnu;
nous les rangeons provisoirement parmi les phytophages. Quant à
celles qu'on a observées avec des chenilles, nous les plaçcons parmi
les coprophiles. Perris [577 bis, p. 221] a trouvé des larves de Céci-
domyies avec des larves de Phora dans une fourmilière; cela ne doit
pas surprendre outre mesure, si l’on considère que le Rév. P. Was-
mann a observé dans une fourmilière des larves d’un Chironomide
qu'il a décrit sous le nom de Ceratopogon Braueri. J'ai observé une
larve à spatule lancéolée et dont le genre m'est inconnu, dans un nid
d’Araignée; peut-être se nourrissait-elle des œuis de l’Araignée, peut-
être aussi n’avait-elle pénétré dans ce nid que pour s’abriter et s’y mé-
tamorphoser.

A. Larves z0ophages.

Parmi les larves qui vivent d’autres insectes, les unes sont endopa-
rasites, c'est-à-dire vivant à l'intérieur de leur hôte; les autres sont
ectoparasites, donc situées en dehors de Jui.

I. LARVES ENDOPARASITES. — L’unique exemple de Cécidomyie z00-
phage vivant à l’état larvaire à l’intérieur de son hôte, est Endaphis per-
fidus Kielf. J'aperçus un jour au mois de septembre, dans le bois du
château de La Grange, des femelles de ce Diptere, voltigeant autour des
feuilles d’Acer pseudoplatanus et se posant sur la face inférieure de
ces feuilles qui était occupée par des colonies d’Aphis platanoïdes
Schr.; il me fut facile de remarquer qu’elles y pondaient leurs œuis
sur les Pucerons. Cet œuf est d’un rouge vif, cylindrique et fixé par
un de ses pôles au dos du Puceron, toujours à proximité des deux
tubes externes. Tantôt le Puceron qui porte cet œuf est encore très
petit, tantôt il est arrivé au terme de sa croissance, c’est-à-dire devenu

(5) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 391

capable de mettre au jour d’autres Pucerons, mais dans tous les cas il
est aptère; je n’ai pas observé d'œufs sur une forme ailée. Parfois
l'œuf était fixé à un Puceron déjà parasité. Un peu avant l’éclosion de
la larve, l'œuf s'incline et paraît alors fixé dans le sens de son grand
axe au corps de l’Aphide. J'ignore comment la jeune larve pénètre
dans le corps de son hôte; je soupeonne que c’est par le même che-
min qu’elle suivra plus tard pour en sortir, car je n’ai pu découvrir
aucune lésion externe sur le corps des pucerons renfermant une jeune
larve. Comme celle-ci est d'un rouge vif et brillant et que le Puceron
est d’un blanc verdàtre ou d’un vert très clair, il est facile de recon-
naître les Aphides attaqués, le parasite étant visible par transparence.
Quand elle est adulte, cette larve est un peu plus longue que l’abdo-
men de son hôte; elle est donc obligée de s’y tenir courbée sur elle-
même, tantôt en forme de point d'interrogation, tantôt en forme d'U;
elle s’y meut pourtant de temps à autre, et sa tête est tournée tantôt
vers la partie antérieure, tantôt vers la partie postérieure du Puceron.
Celui-ci ne paraît pas souffrir beaucoup de la présence de ce parasite,
car il continue à sucer la feuille d'Érable et à s’y déplacer avec autant
de facilité que ses congénères indemnes. Quand la larve est arrivée à
sa maturité, elle sort par l'ouverture anale du Puceron; lorsqu'elle
est entièrement dégagée, elle se courbe en arc sur le limbe de la
feuille et s’élance avec la même agilité que les larves de Contarinia.
On remarque aussi des Pucerons parasités qui ont une couleur bru-
nâtre; ceux-là paraissent malades, se meuvent à peine et meurent
avant ou un peu après la sortie du parasite.

II. LARVES ECTOPARASITES. — Parmi les larves de Cécidomyies ectopa-
rasites, c’est-à-dire qui se tiennent en dehors de l'hôte aux dépens duquel
elles vivent, nous distinguons trois catégories : la 1e comprend celles
qui se nourrissent d’Aphides, de Psyllides ou de Coccides ; la 2° se
rapporte aux espèces vivant d'Acarides; la 3° renferme celles qui
vivent de larves et de nymphes de Diptères et peut-être aussi de larves
de petits Coléoptères.

4° Larves sternorhynchophages. Cette catégorie comprend le genre
Bremia Rond. et quelques Lestodiplosis Kieff. En effet, tous les Bremia
dont le genre de vie est connu se nourrissent d’Aphides, plus rarement
de Psyllides et de Coccides. Rondani [605, p. 443] fut le premier à ob-
server que les larves d’une Cécidomyie, qu'il appela Cecidomyia aphidi-
myza et sur laquelle il fonda plus tard le genre Bremia, se nourris-
saient des Pucerons du Pècher, du Prunier, du Rosier, du Laitron et
d’autres plantes encore. Il remarqua que ces larves surprenaient les

332 VII. Kigrrer. (152)

Pucerons, s’y fixaient et en suçaient les parties liquides, se distinguant
pourtant, dans leur manière d'agir, des larves de Syrphides. Celles-ci,
observées déjà par Réaumur, dévorent toutes les parties internes des
Pucerons et n’en laissent que la peau; celles de Bremia, au contraire,
se contentent d’en sucer les parties liquides, de sorte que leur victime,
bien qu’elle succombe et périsse par suite de cette succion, conserve
encore la forme extérieure des Pucerons vivants et paraît seulement
un peu froncée. H. Loew et Winnertz ne paraissent pas avoir ajouté foi
à cette observation de l’auteur italien, car tous deux ont décrit des
espèces de Bremia, sans en connaître les mœurs. Ce ne fut que bien
plus tard, en 1878, que les observations de Rondani furent confirmées
par Fr. Low [415, p. 402-404], ce qui était du reste peu difficile, car
ces larves se trouvent fréquemment. Selon Fr. Low, ces larves seraient
douées de la faculté de sauter, ce que je ne connais d'aucune espèce de
ce genre. Ce qui paraît étonnant, c’est que les Pucerons au milieu des-
quels elles vivent ne semblent nullement connaître le danger dans
lequel ils se trouvent, car ils ne cherchent pas à fuir devant ces larves
qui en veulent à leur vie. Bien au contraire, chaque larve est ordinai-
rement cachée par le grand nombre d’Aphides qui l’entourent et la
couvrent; elle se fixe à n'importe quelle partie du corps de sa victime
qui demeure immobile et n’essaie même pas de se déplacer. On peut
donc leur appliquer ce que Réaumur écrivait de celles des Syrphides :
« Il n’est point dans la nature d'animal de proie qui chasse aussi à son
aise que le fait notre ver. Couché sur une feuille ou sur une tige il est
environné de toutes parts des insectes dont il se nourrit; souvent même
ils le touchent de tous côtés, il peut en prendre en quantité sans chan-
ger de place. Non seulement les pauvres petits Pucerons ne le fuient
pas, mais on en voit même plusieurs à la fois qui passent sur son
corps. Ce n’est qu'après avoir mangé ceux qui l’environnaient, qu’il à
besoin de se transporter dans un autre endroit ».

Comme Fr. Lôw l’a déjà remarqué, ces larves de Cécidomyies aphi-
dophages ne sont pas réduites, ou du moins pas toutes, à vivre d’une
espèce déterminée ; j'ai remarqué moi-même qu’une espèce peut vivre
de Pucerons appartenant à diverses espèces. Habituellement cependant
elles ne s’attaquent qu'à une espèce déterminée. Je citerai comme
exemple Bremia urticariae Kieff. dont j’observe chaque année les larves
en abondance sur Aphis urticaria; à côté des Orties infestées par les
Aphides, se trouvent des Galium verum L. tout aussi couverts d’Aphis
galii L.; or les larves de la Cécidomyie ne paraissent jamais que sur
les Orties et on y trouve des individus de différentes phases, parfois
réunis sur une même plante.

(153) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 333

Plusieurs larves de Cécidomyies vivent de Psyllides; telles sont
celles de Lestodiplosis liviae Rbs. qui se nourrissent de Livia juncorum
Latr.; celles d’un autre Lestodiplosis, dont je n’ai pas obtenu l’éclosion.
qui vivent aux dépens d’Aphalara maculipennis Fr. LWw.; celles dun
Bremia sp.? observées par Rübsaamen dans les galles de Psyllopsis
fraxini L.

On connait de même plusieurs espèces vivant aux dépens de Coc-
cides ; ce sont Bremia abietis Kieff., que j'ai obtenu de galles de Cher-
mes abietis, et Bremia sp.? observé plus tard par Rübsaamen sur les
larves de Chionaspis vaccinii Bouché et sur Chermes corticalis. On
pourrait encore ajouter celles de Lestodiplosis septemmaculata Walsh,
observées par Walsh aux États-Unis, dans des galles de Coccides, sur la
Vigne ; l’auteur dit encore qu'il a obtenu le même insecte de galles de
Rhabd. salicis-brassicoides et de champignons des branches de Prunus
spinosa; je pense que dans ces deux derniers cas, il s'agissait d’une
espèce voisine, vivant de larves de Cécidomyies.

2 Larves acarophages. Vallot fut le premier qui signala des larves
de Cécidomyies vivant d’Acarides, auxquelles il donna le nom de Ceri-
domyia acarisuga Wall. [764, p. 95]. Il écrit que les « larves apodes, à
tête armée d’un crochet (!) » se trouvent sur la face inférieure des
feuilles de Chelidonium majus où elles se nourrissent d’Acarus dont
elles sucent l’intérieur; elles se métamorphosent à l’aisselle des ner-
vures, dans un cocon blanc. Peut-être faut-il rapporter ici encore Lesto-
diplosis Woeldickii Cont. que Contarini a obtenu, en 1840, de larves
vivant sous les plumes d’Oiseaux empaillés.

Divers auteurs ont observé des larves de Cécidomyies vivant parmi
les Acarides de la sous-famille des Phytoptides, dans des cécidies
occasionnées par ces dernières. La première de ces observations
revient à Réaumur pour les galles corniculées du Tilleul. Bremi
(50, p. 30] les indique pour l’Erineum de Poterium sanguisorba et
pour létroit enroulement marginal des feuilles de Salix alba. H.
Loew en découvre dans les galles rouges de la grosseur d’un grain de
millet, éparses sur les feuilles des Saules. Winnertz [816, p. 159-160]
communique la même observation et décrit en outre, sous le nom de

(1) A cause de cette expression, les auteurs du «Synopsis Cecidomyidarum » ont
mis en doute l’assertion de Vallot, en écrivant que l’insecte renfermé dans le
cocon n’était pas une Cécidomyie ou bien qu’il n'avait rien de commun avec
la larve observée par Vallot. 11 me semble que c'est à tort : Réaumur emploie
la même expression de « crochet » pour les larves de Clinodiplosis galli-
perda Fr. Lw. et de Perrisia liliam volvens Rbs. [587, p, 425].

334 J.-J. KIEFFER. (454)

Diplosis peregrina, une espèce dont les larves vivent dans les phytopto-
cécidies des feuilles du Prunier et du Saule. Le même auteur indique
encore que les déformations de Thymus serpyllum dues à Phytoptus
Thomasi Nal. renferment quelquefois des larves de Cécidomyies, comme
Vallot et H. Loew l'avaient déjà remarqué avant lui, et Perris [576,
p. 478] et Fr. Low (4, p. 159] après lui. Perris cite encore quatre
autres exemples de larves de Cécidomyies vivant dans des galles de
Phytoptides sur Origanum, Lysimachia, Mentha rotundifolia et Trifo-
lium sublerraneum [!. c., p. 179]. Von Frauenfeld en observe avec des
Phytoptides dans les galles d’Evonymus [147]. De mème Fr. Low cite
encore les galles de Phytoptus galiobius Nal. sur Galium verum, de lEri-
neum alneum sur Alnus glutinosa et de l'Erineum betulinum sur Betula,
comme hébergeant de ces larves ({. c.). Au même endroit, il donne
aussi une figure d’une de ces larves (pl. IF, fig. 9). Quoique bien im-
parfait, ce dessin suffit pour nous convaincre que Pauteur avait bien
une larve d'Arthrocnodax Rbs. sous les yeux. Un peu plus tard, en
1888, Targioni-Tozzetti obtint une espèce des phytoptocécidies des bour-
geons de Corylus avellana, et la décrivit sous le nom de Diplosis coryli-
gallarum, en faisant remarquer que la forme des antennes et la nerva-
tion alaire indiquaient un genre nouveau. Plus récemment, elles ont
été observées en grand nombre dans diverses phytoptocécidies, —
Quant à leur genre de vie, j'ai indiqué en janvier 1895 [290, p. 13]
qu’elles se nourrissent des Acarides contenus dans ces galles, et j'ai
donné au même endroit la première description détaillée d’une de ces
larves. Les anciens auteurs les considéraient comme simples commen-
saux des Phytoptides. Toutefois Winnertz remarque [816, p. 196] :
« J'ai observé plusieurs fois que les larves de Diplosis peregrina 16-
chaient avec avidité les Acarides, mais jamais je n’ai trouvé dans une
salle qu'elles habitaient la dépouille d’un Acaride. Il reste encore à
découvrir si ces larves vivent des excréments des Acarides ou bien si
elles partagent leur nourriture ».

Je communique iei une observation que j'ai faite au mois d'août
1894.

Sur la face inférieure des feuilles d’un Orme pleureur, j'avais remar-
qué de très petits vers rouges, immobiles, généralement fixés à l'angle
jormé par deux nervures, rarement éloignés de toute nervure. J'empor-
tai alors plusieurs de ces feuilles afin de pouvoir observer à loisir. A
l'aide de Ja loupe, je pus découvrir des Acarides à corps trapu (Phyto-
ptides?), vivant sur le dessous de ces feuilles sans que leur présence
fût trahie sur le dessus par une déformation ou par une décoloration.
La plupart des larves de Cécidomyies paraissaient êlre au repos; quel-

(155) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 399
ques-unes cependant, immobiles comme les autres, avaient devant la
partie effilée de leur corps, c’est-à-dire à l'extrémité de leur tête, un
minime corpuscule immobile qui semblait leur servir de nourriture.
Enfin j’eus la bonne chance de voir une larve se mettre en quête d’une
proie. Elle se mouvait lentement, tournant la tête à chaque fois qu’elle
avançait, de droite et de gauche, comme pour sonder les alentours;
parfois elle passait à côté d’un des Acarides, une fois même par-des-
sus, enfin je la vis s'arrêter : sa tête venait de heurter un Acaride:
celui-ci ne parut pas s’en inquiéter ; je crus distinguer qu'il fut jeté sur
le côté et qu'il replia son corps en arc de façon à appuyer ses deux ex-
trémités contre la tête de son agresseur. Je n’avais malheureusement
pas de microscope à ma disposition, de sorte que mon observation ne
put être complète. L'examen à la loupe me fit voir un certain nombre
de dépouilles d’Acarides, preuves irrécusables de la voracité de ces
larves. Le genre Lestodiplosis comprend également, selon M. Rübsaa-
men, une espèce acarivore, à savoir L. tarsonemi Rbs. qui se nourrit
de Tarsonemus sp. ?

3° Larves diptérophages. Les espèces dont il est question ici forment
le genre Lestodiplosis Kieff. Leurs larves, munies de Pseudopodes, ont
été décrites déjà par Bouché [43, p. 25] et Perris [576, p. 170], mais ces
deux auteurs n’ont pas connu leur genre de vie. En 1891 [623, p. 6-7],
Rübsaamen déerivait une larve de Lestodiplosis, en ajoutant qu'il l'a-
vait trouvée dans une galle de Galium, dont l’auteur, c’est-à-dire « la
larve de Cecidomyia galii, était morte dans la cécidie. Elle était molle
encore, mais desséchée, et paraissait avoir été abandonnée par un pa-
rasite. N'ayant pas trouvé de larve d'Hyménoptère dans cette galle, je
crois pouvoir admettre que lalarve que je viens de décrire vivait comme
parasite à l’intérieur de celle de Cecidomyia galii ». Une observation
que j'avais faite antérieurement sur une larve semblable, contredisait
l'observation de M. Rübsaamen ; je la fis paraître dans les termes suivants.
dans le courant de la même année [273, p. 265] : « J'ai observé, l'automne
dernier, sous une écorce de Hêtre, un certain nombre de larves blanches
d’Epidosis (!), qui étaient presque mortes ou fanées. Parmi elles se
trouvaient trois larves rouges et vivantes, dont l’une était fixée, immo-
bile, à une larve d'Epidosis et semblait la sucer. Jai donc supposé que
ces larves rouges étaient parasites des larves blanches et vivaient non
point dans le corps de leur hôte, mais en dehors, le suçant comme le
font les larves des Torymides ». J'ai eu, depuis cette époque, souvent oc-

1. C'est-à-dire Camptomyia Kieff., genre que j'ai plus tard détaché d'Epi-
dosis H. LWw.

330 J.-J. KIEFFER. (156)

casion de constater que les larves de Lestodiplosis sont ectoparasites de
larves d’autres Cécidomyies ; j'ai même observé qu'elles le sont encore
même quand ces dernières se sont déjà recouvertes de leur cocon pour
se métamorphoser. Sous l'écorce d’uné branche morte se trouvaient
des larves de Rübsaamenia Kieff. dont plusieurs s’étaient déjà envelop-
pées de leur cocon. En déchirant un de ceux-ci, je fus fort étonné d’y
trouver deux larves accolées l’une à l’autre, l’une, d’un jaune sale, était
celle du propriétaire légitime, l’autre, d’un rouge sang, était celle d’un
Lestodiplosis; comme les larves étaient encore vivantes toutes deux,
j'en conclus que l'invasion devait être récente.

L'observation suivante me fit voir que les larves des Lestodiplosis
attaquent encore les nymphes des Cécidomvies. J'avais recueilli un cer-
tain nombre de galles de Rhopalomyia tanaceticola Karsch, dans l’es-
poir d'y trouver la larve que je voulais soumettre à l'étude; mais je ne
pus y trouver que des nymphes, dont plusieurs étaient desséchées,
sans qu'il y eût trace de la cause de cette dessiccation, tandis que d’au-
tres qui paraissaient seulement un peu froncées, portaient sur elles la
larve d’un Lestodiplosis qui les sucait.

Ces prédateurs ne s’attaqueraient-ils pas aussi à des larves d’autres
petits Diptères ou de Coléoptères? Cela me paraît probable, car j'ai
observé leurs larves sous l'écorce de branches mortes et tombées à
terre, plusieurs fois parmi les larves de Cryphalus fagi, d'autres fois
parmi celles de Sciarines, sans qu’il me füt possible d’y voir une autre
larve de Cécidomyie, qui aurait pu leur servir de proie, mais aussi
sans qu'il me fût possible de prouver autrement que les larves de
Lestodiplosis s'étaient attaquées à celles des petits Coléoptères ou des
Sciarines, sinon par le fait que certaines larves de ces derniers étaient
mortes et desséchées.

B. Larves coprophiles (1).

On trouve fréquemment des larves de Cécidomyies parmi les déjec-
tions d’autres larves. Perris en parle le premier dans sa description de
Lestodiplosis entomophila, de la façon suivante [575, p. 274-276] :

« En ouvrant mes boites d'insectes, il m'était arrivé fort souvent de
voir voler avec agilité, à travers la forêt d’épingles fixées sur le liège,

(1) J'ignore ce qu'il faut penser de l'observation de Bouché, d’après la-
quelle les larves de Cecid. bicolor Meïig. vivraient pendant l'hiver dans de la
bouse de vache entrant en décomposition et s'y métamorphoseraient au prin-
temps suivant [43, p. 25].

(157) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 337

un Diptère presque microscopique, dont la présence en ces lieux m'a-
vait surpris plus d’une fois. Rien n’indiquait dans les allures de ce
petit insecte qu’il eût été enfermé malgré lui, car quoique sa prison
fut grande ouverte, il ne manifestait aucun empressement à la quitter.
M'étant emparé de plusieurs de ces petits Diptères, je reconnus en eux
les deux sexes d’une espèce de Cécidomyie qu'après étude je considé-
rai comme nouvelle. Le hasard m'ayant mis à même de connaitre
son histoire, je me décide à la publier.

« Tous les entomologistes savent qu’un maudit Acarus s’introduit et
pullule souvent dans les collections, où il ronge les poils, le duvet des
insectes et même leurs tendons. Comme j'observais, un jour de no-
vembre, à la loupe, un Onthophagus sur lequel ce détestable aptère
avait déposé ses excréments et laissé des dépouilles, je vis ramper au
milieu de ces impuretés trois larves blanches qui, soumises au micros-
cope, offrirent à mes yeux tous les caractères des larves de Cécido-
myies. Il ne m'en fallut pas davantage pour expliquer la présence
dans mes boites du Diptère dont j'ai parlé plus haut.

« Je savais depuis longtemps que les larves de Cécidomyies ne se dé-
veloppent pas toujours dans des galles, car j'en ai trouvé bien sou-
vent sous les écorces des arbres et dans les tiges creuses de plusieurs
plantes mortes ou sur le déclin. Je me mis à explorer mes boites
et à chercher d’autres insectes sur lesquels les Acarus eussent
laissé des traces, et j'observai sur quelques-uns des larves semblables.
Je plaçai ces insectes, ainsi que lOnthophagus, dans une petite boîte,
et aux mois de mai et de juin j'obtins plusieurs Cécidomyies ». Ce
qu'il y a de remarquable dans cette description, c’est que la larve de
Coprodiplosis entomophila Perr. est blanche; toutes celles que j'ai ob-
servées jusqu'ici étaient rouges, comme celles de Lestodiplosis, dont du
reste les Coprodiplosis ne forment qu’un sous-genre.

Les larves que j'ai observées le plus fréquemment dans les déjections
des insectes, surtout dans celles des grosses larves de Tipulides qu’on
trouve fréquemment dans le bois pourri, appartenaient aux Lestré-
mines, Lestodiplosis ou Clinodiplosis. Les larves de Clinodiplosis coriscii
Kieff. vivaient parmi les excréments que contenaient les mines aban-
données, produites sur les feuilles de Chêne par la chenille de Coris-
cium Brongniardellum. D'autre part, j'ai reçu par l'entremise de J. Mik
un Clinodiplosis dont la larve vivait dans le sac d’une chenille de
Psyche helix, en même temps que la chenille; j'ai pensé qu'elle vivait
peut-être des déjections de cette dernière, mais le lépidoptérologiste
Hoffmann, qui l'avait obtenue, me fit savoir que les sacs des Psychides

ne renfermaient point de déjections. Quel rapport la larve de Cécido-
Ann. Soc. Ent. Fr., LxIX, 1900. 29

338 J.-J. KIEFFER. 158)

mvie avait-elle alors avec la chenille? Je l’ignore. Howard cite un cas
semblable.

C. Larves phytophages.

La plupart des larves de Cécidomyies rentrent dans cette catégorie.
Les unes provoquent sur leurs plantes nourricières des cécidies dans
lesquelles elles vivent, les autres sont gallicoles, mais non cécidogènes ;
d’autres enfin ne produisent pas de déformation et ne vivent pas non
plus dans une cécidie.

[. LARVES PHYTOPHAGES NON CÉCIDOGÈNES NI GALLICOLES. — Les unes
vivent sur des plantes phanérogames, les autres sur des cryptogames.

1° Sur Phanérogames. Toutes les parties d’une plante peuvent hé-
berger et nourrir des larves de Cécidomyies, sans qu'il y ait produc-
tion de galle, Nous distinguons donc celles-ci de la façon suivante.

A. Larves floricoles. Beaucoup d'espèces vivent dans les épillets
des Graminées. On connaît jusqu’à présent les suivantes : Contarinia
tritici Kirb. et Clinodiplosis mosellana Géh. (aurantiaca Wagn.), sur le
Blé, le Seigle et l'Orge ; Contarinia brizae KiefT., sur Briza media ; Con-
tarinia dactylidis H. Lw., sur Dactylis glomerata; Contarinia avenue
Kieff., sur Avena pubescens L.; Contarinia arrhenatheri Kieff., sur
Arrhenatherum elatius Koch ; Stenodiplosis geniculati Reut., sur Alope-
curus geniculatus; Oligotrophus alopecuri Reut., sur Alopecurus pra-
tensis ; et Perrisia airae Kieff., sur Aûra fleæuosa. Curtis observa aussi
une espèce sur Alopecurus agrestis. Bien que ces espèces ne produi-
sent pas de galles, elles occasionnent cependant la chlorose des épillets
et une atrophie de l'ovaire sur lequel elles sucent. D’après mes obser-
vations, je ne puis admettre qu’elles se nourrissent aussi de pollen,
comme le disent les auteurs du « Synopsis » [22, p. 79]. Avec les Grami-
nées, ce sont les fleurs des Composées qui nourrissent le plus fré-
quemment des larves de Cécidomyies. Perris [577, p. 69] signale de
ces larves orangées dans les capitules d’Achillea millefolium, Cirsium
arvense, Crepis virens, Hypochaeris radicata et Leucanthemum vulgare.

Jai signalé les larves de Clinodiplosis cilicrus Kieff. dans les capitules
de Centaurea jacea et scabiosa, de Carduus nutans,de Cirsiwm arvense,
et de Carlina vulgaris; de Clinodiplosis sp. dans les fleurs de Solidago
virga aurea et de Tanacetum vulgare [323, p. 37-38]; de Perrisia com-
posilarum dans les capitules de Æieracium murorum, pilosella et um-
bellatum et d'Hypochaeris radicata ; dans cette dernière fleur vit aussi
Contarinia nubilipennis KiefT. et hypochaeridis Rbs. D’après les obser-

(459) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 339

vations de Rübsaamen et les miennes, les larves de Perrisia cirsii Rbs.
vivent dans les calathides de Cérsium et de Carduus; de Perrisia
crinita dans les calathides de Senecio silvatica et jacobaea; de Macro-
labis achilleae Rbs. dans celles d’Achillea millefolium; de Rhopalomyia
Magnusi Rbs. dans celles d’'Artemisia vulgaris et campestris ; de Clino-
diplosis rosiperda Rbs. dans celles des Rosiers. La larve d’un Perrisia
n. sp. vit dans les fleurs d’Aquilegia vulgaris, sans les déformer,
d’après le témoignage de M. Paul de Peyerimhoff; celle de Perrisia ri
paria Winn. vit de même dans les fleurs de Carex riparia.

B. Larvesfructicoles. Diverses sortes de fruits nourrissent encore
de ces larves, sans subir de déformation. Les cônes de l'Épicea et du
Sapin nourrissent les larves de Perrisia strobi Winn. et de Clinodi-
plosis strobi Kieff. Les baies de Polygonum multiflorum renferment des
larves d’une espèce encore inconnue, selon Mik [501, p. 311-316]; celles
de Ja Pomme-de-terre, contiennent les larves d’Asphondylia punica
March. La capsule du Coquelicot héberge celles de Perrisia papaveris
Winn. J'ai observé des larves blanches de Clinodiplosis sur les fruits de
Stachys silvatica, et des larves de Contarinia sur ceux de Symphytum
officinale. Certaines espèces vivent dans des gousses ou dans des sili-
ques, tantôt sans y produire d’autre déformation que des taches jau-
nâtres, tantôt en y provoquant de légères bosselures, de sorte qu’alors
elles rentrent dans la catégorie des espèces cédidogènes; telles sont
celles de Contarinia Marchali Kieff. et de Clinodiplosis sp.? dans les
fruits de Fraxinus excelsior ; de Contarinia pisi Winn. dans les gousses
de Pisum sativum; de Contarinia pulchripes Kieff. et Clinodiplosis sp.?
dans celles de Sarothamnus scoparius et de Genista pilosa ; de Contarinia
silvestris Kieff. dans celles de Lathyrus silvestris; de Contarinia sp.?
dans les siliques de Sinapis arvensis et Brassica rapa; de Dasyneura
brassicae Winn. dans les siliques du Colza; de Contarinia asclepiadis
Gir. dans les fruits d’Asclepias vincetoricum. Fr. Low observa des larves
dans les utricules non déformées d’un Careæx.

C. Larves caulicoles. Beaucoup d'espèces intéressantes vivent
sous les gaines de plantes Monocotylédones, sans y provoquer une dé-
formation. Kaltenbach [248] a observé en 1874, sous les gaines d’Iris
Pseudacorus, les larves de Dicerura Kaltenbachii Rbs. Sous les gaines
de Carex j'ai observé [323 et 327] celles de Clinodiplosis caricis Kieff.,
Clinodiplosis sp. n., Dasyneura Sp. n. et Joannisia caricis Kieff.; et
M. Rübsaamen [642 et 642 bis], l'année suivante ('), celles de Rhizo-

(1) M. Rübsaamen se montre vraiment comique quand il écrit, le 31 mars 1899

340 J.-J. KIEFFER. (160)

myia circumspinosa Rbs., Thurauia aquatica Rbs., et uliginosa Rbs. et
plus tard encore Colomyia caricis Rbs. et Dasyneura corneola Rbs. Fai
observé de même (4, c.), sous les gaines de Scirpus : Dasyneura
scirpi Kieff., Dicerura scirpicola Kieff., Wasmanniella aptera Kielr.,
Clinodiplosis sp. n.; sous celles d’Eriophorum, une Lestrémine dont
le genre m'est inconnu; sous celles d’Acorus une larve rouge de Cé-
cidomyine; sous celles d’Aira fleæuosa, la larve de Lasioptera calama-
grostidis Rbs.; tandis que M. Rübsaamen à observé cette dernière anté-
rieurement sous les gaines de Calamagrostis epigeios, puis celle
d'Octodiplosis glyceriae Rbs., sur Glyceria; celle d'Asynapta Thuraui
Rbs., sur Calamagrostis lanceolata et des larves encore inconnues sur
Phragmites communis, Typha latifolia et Sparganium [637].

D'autre part, M. von Moor [520] observa les larves de Clinodi-
plosis oculiperda Rbs. sur l’écusson des greffes, à l'endroit où les deux
cambium se touchent, sur le Pêcher, l’Abricotier, le Poirier et le Ro-
sier.

Enfin d’autres larves vivent non plus à l'extérieur, mais à l’intérieur
des tiges. Von Frauenfeld et Giraud observeèrent celles de Lasioptera
flexuosa Winn. à l’intérieur de la tige de Phragmiles communis. Dans
le chaume de Calamagrostis lanceolata, Dactylis glomerata et Triticum
repens j'ai observé celles de Lasioptera graminicola Kielf.; dans les
tiges sèches de Senecio silvatica et de Centaurea jacea j'ai constaté en
hiver la présence de larves d’un Clinodiplosis.

D. Larvesfoliicoles. H. Loew signale des larves de Cécidomyies
qui, selon lui, vivraient en liberté sur des feuilles de Veronica becca-
bunga [402, p. 25]. Quoi qu'il en soit de ce cas, nous devons à M. le
baron von Osten-Sacken la connaissance d’une larve, Cecidomyia (?)
glutinosa O. S., qui vit dans l'Amérique du Nord, sur les feuilles de
Caryia [550, p. 17]. Un fait analogue à été constaté plus tard pour
l’Europe par M. le docteur Fr. Thomas, pour la larve de Cecidomyia

(642 bis, p. 58], donc plus d'une année après ma publication, une longue page
pour expliquer au lecteur qu'il avait observé des larves sur Carex bien long-
temps avant ma publication sur ce sujet; puis, renversant les rôles comme il le
fait d'ordinaire, il ajoute : « Pendant que je continuais ainsi mes recherches,
M. Kieffer, stimulé par moi (sic!), s'est mis aussi à chercher des Cécidomyies
sur les Carex avec l'ardeur qu'on lui connait, et il a réussi à obtenir quelques
résultats qu'il à publiés dans sa « Synopse des Cécidomyies d'Europe et d’Al-
gérie ». Le pauvre professeur de Berlin est vraiment bien à plaindre! Et
pendant qu'il ne néglige aucune occasion de se rendre ridicule, il se lamente et
écrit : « M. Kieffer veut me rendre ridicule » (Entom. Nachr. Berlin, 1896).

(161) Cecidomyides d'Europe et d'Algérie. 341

Pseudococcus Rhs., qui vit sous les feuilles de certains Saules et s’y
forme une enveloppe avec les poils du limbe [720 bis].

E. Larves lignicoles et corticoles. La plupart des Epidosides,
des Lestrémines et des Hétéropézines habitent le bois mort ou l'écorce.
J'avais d’abord pensé que ces larves vivaient peut-être de champignons
dont le mycelium s’étendrait sous l'écorce ou dans le bois mort ou
pourri, mais je me suis convaincu que l’on trouve souvent ces larves
là où il n’y a pas trace de champignon. Il faut donc admettre qu’elles
vivent du suc qu'elles peuvent tirer du bois mort ou de l'corce. Le
Hêtre et le Chêne hébergent le plus d’espèces ; le Charme etle Bouleau
en nourrissent peu; les Conifères, le Peuplier, le Saule et les arbres
fruitiers n’en renferment que rarement.

Un fait bien remarquable est celui de larves de Cécidomyies vivant
dans du bois de Chêne fraichement coupé et sans trace de décomposi-
tion, et cela sans s’y pratiquer de conduit. Cela paraît impossible et
pourtant c’est vrai. Je connais cinq espèces qui sont dans ce cas, à
savoir Xylodiplosis praecox (Winn.) Kieff., Ledomyia lugens Kielr.,
une larve que je crois être celle de Dicrodiplosis longipes n. sp., une
larve de Rübsaamenia sp.? et une espèce dont je ne connais que
la dépouille nymphale, trouvée en grand nombre dans les pores
du bois; les trois premières se rendent en terre pour se métamor-
phoser. Prenons la première comme exemple, d'autant plus qu’elle
abonde en Lorraine. Winnertz dit de cette espèce : « On la trouve
communément, dès les premiers jours de mars, dans les forêts,
surtout sur du bois de Chêne fraichement coupé ». Comme Win-
nertz, j'ai été frappé de voir cette espèce rechercher exclusivement
le bois de Chêne et il me fut bientôt possible d’en découvrir le motif.
C'est ainsi que j'ai pu signaler en 1888 [263, p. 245] qu'on « trouve
les femelles de cette espèce en grand nombre sur le bois de Chêne frai-
chement coupé et empilé, parcourant la surface de section transver-
sale du bois et y enfoncant profondément sa longue tarière dans les
minimes pores du bois. A plusieurs reprises j’en vis qui ne parvenaient
plus à retirer leur oviducte, de sorte qu'on pouvait les saisir facile-
ment avec les doigts. Bien que cette espèce soit extrèmement commune
dans les bois de Bitche, le mäle me demeure encore inconnu comme à
Winnertz; je suppose que le mâle n’abandonne pas l'endroit où l’éclo-
sion à eu lieu, tandis que les femelles s’empressent de chercher du bois
de Chêne coupé, afin d’y déposer leurs œufs » .J’eus beau revenir sou-
vent à ces las de bois et examiner soigneusement les pores à la loupe,
détacher même des morceaux du bois, je ne pus trouver aucune larve;

342 J.-J. KIEFFER. (162)

il me paraissait du reste impossible qu’une Jarve adulte püt être logée
dans d'aussi étroits vaisseaux. Un jour, vers la fin du mois de mai,
après une pluie abondante qui avait duré toute la matinée, passant en
lorêt près d’un tas de bois, je vis, à ma grande surprise, une foule de
larves rouges sortant des pores de ce bois, sur la surface de section
transversale de celui-ci, se courbant en arc et s’élançant au loin. L’o-
pération de la sortie était pénible et longue; elle coûta la vie à plus
d’une larve; çà et là on en voyait qui dépassaient de la moitié de leur
corps la surface du bois et ne pouvaient plus sortir davantage; encore
les jours suivants on pouvait voir leur corps desséché, engagé en
partie entre les pores. D'autres, après avoir réussi à se dégager,
tombaient dans une toile d’araignée, où elles trouvaient également la
mort. Celles qui parvinrent heureusement jusqu’à terre se hâtaient de
disparaitre entre les feuilles et de s’enfoncer dans le sol, où elles de-
meuraient à une profondeur de un à deux centimètres.

Je recueillis alors un grand nombre de larves que j’emportai; en
outre, comme le bois devait être enlevé de la forêt en été ou en au-
tomne, je notai exactement l'endroit. L'hiver suivant fut très rigou-
reux ; depuis le 17 février jusqu'à la mi-mars, la neige recouvrit le sol;
la température était descendue jusqu’à — 29°C, et, encore au commen-
cement de mars, elle était à — 20°. A partir de la mi-mars le temps fut
à la pluie. Le 28 du même mois, également après une pluie d’assez
longue durée, je me rendis à l'endroit marqué, et comme les jours pré-
cédents, je soulevai les feuilles qui recouvraient le sol. Cette fois je
découvris des Xylodiplosis fraichement éclos, d’autres en train d’éclore.
Un rayon de soleil suffit pour me faire voir bientôt une foule de mâles
prenant leur essor, sans toutelois quitter l’espace assez restreint où les
éclosions avaient eu lieu, s’élevant et s’abaissant alternativement,
comme pour observer ce qui se passait sur le sol. L’accouplement eut
lieu sur les feuilles mêmes, car les femelles dont l’éclosion avait été
plus tardive que celle des mâles, s'étaient à peine dégagées de leur
dépouille nymphale et ne pouvaient pas encore voler. Dès qu’une fe-
melle fécondée était à même de prendre son essor, elle s’envolait au
loin, cherchant du bois de Chêne coupé pendant l'hiver, pour lui con-
lier ses œufs, tandis que les males demeuraient à l'endroit même où
leur éclosion avait eu lieu. Cela explique comment les anciens auteurs
qui se sont occupés de la Cécidomyie du Blé ne trouvaient jamais que
des femelles parmi les Céréales.

Des observations réitérées m'ont permis de conclure que les larves
de Xylodiplosis ne pouvaient sortir du bois, qu'après que celui-ci eut
été pénétré par la pluie; quand celle-ci se fait attendre, la sortie des

(163) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 343

larves est retardée, parfois de tout un mois. La conformation du corps
de ces larves, dont les segments sont finement striés transversale-
ment (!), aide à opérer leur sortie au travers de vaisseaux moins
larges que ne l’est le corps des larves. M. Paul de Peyerimhoff, me fit
le 11 juin 1896, un envoi de larves de Xylodiplosis recueillies près de
Nancy dans des circonstances analogues. «Les larves rouges, m'écrivait-
il, se trouvaient sur les sections transversales des quartiers de Chêne
empilés… Il pleuvait à verse et les larves semblaient d'autant plus ani-
mées que le milieu était plus humide ».

Les larves des deux autres espèces, que je n’ai observées qu’une seule
fois, sortaient de même après une pluie abondante. Pour aucune de
ces trois espèces je n'ai réussi à obtenir l’éclosion des exemplaires re-
cueillis et conservés en chambre chauffée.

F. Larves résinivores. Quatre espèces sont à rapporter ici, à sa-
voir Cecidomyia pini D. G.,resinicolaO. $S., pini-inopis O. $. et pini-ri-
gidae Pack. Je ne connais que les deux premières. Jusqu'à présent,
les mœurs du seul représentant pour l'Europe, c’est-à-dire de Cecido-
myia pini D. G. étaient imparfaitement connues. Les divers auteurs qui
s’en sont occupés, tels que De Geer, Ratzeburg et Perris, n’ont pas su
dire autre chose, sinon qu’on trouve le cocon renfermant soit la larve,
soit lanymphe,surles aiguilles du Pin. Il est pourtant facile de trouver
la larve en liberté et dans toutes ses phases, car cet insecte a plusieurs
générations par an. Dans les plantations de Pinus silvestris, il arrive,
pendant plusieurs années consécutives, que l’on fait avec une ha-
chette une entaille au tronc des arbres que les bücherons devront
abattre Phiver suivant. Par la suite cette entaille, une partie de l'écorce
et du bois ayant été enlevée par la hachette, se couvre de résine. C’est
sur le bord de cette blessure que la Cécidomyie vient déposer ses
œufs. Les larves disparaissent sous la résine durcie, de facon à être en
contact avec le bois qui exsude sans cesse de cette résine ; plus tard on
les voit par transparence au travers de celle-ci, tantôt solitaires, tantôt
réunies par groupes de 2 à 6. On peut aussi les trouver plongées dans
ou placées sur de la résine encore un peu liquide, sans être recouvertes
de résine durcie. Pour la métamorphose, elles se rendent sur les parties
avoisinantes de l'écorce; d’autres aussi se forment leur cocon sur la
résine même, sans se déplacer. D’après ces observations, il est donc
certain que les larves de Cecidomyia pini vivent de résine à l’état liquide.
Comme les bourgeons, à l'extrémité des rameaux, exsudent toujours

(1) J'en ai donné une description en janvier 1895 [290, p. 15]. Voir aussi
pl. 26, fig. 8.

344 J.-J. KIEFFER. (164)

une petite quantité de cette résine, la Cécidomyie y dépose également
ses œufs; mais je n’y ai que rarement trouvé plus d'une larve; pour
la métamorphose, celle-ci se rend sur une des aiguilles adjacentes ou
bien encore elle demeure sur le bourgeon même.

Les trois autres espèces ont été observées dans l'Amérique du Nord,
dans de la résine de Pins. Voir page 309 (129).

G. Larves radicicoles.Je ne connais que deux espèces vivant aux
dépens de racines, mais sans y produire une déformation. L'une, Di-
crodiplosis radicicola n. sp., vit à l’état larvaire à l’intérieur des racines
de Ranunculus acer L.; sans doute que les œufs sont pondus sur les
feuilles radicales, au collet de la racine et que les larves pénètrent en-
suite dans cette dernière qui finit par périr et se décomposer. Les
plantes atteintes se reconnaissent parfois à leur aspect maladif, ce qui
a lieu quand les larves sont bien nombreuses et que les racines com-
mencent à se décomposer.

La seconde, Rhizomyia perplexæa Kieff., vit sur les fines racines de
Carex; on y trouve ses larves en grande société, appliquées si étroi-
tement à la radicelle, que je les avais tout d’abord prises pour des
Coccides.

H. Larves vivant de matières végétales décomposées,
non ligneuses. Dans des résidus de Betterave, Pagenstecher a observé
des larves d'Hétéropézine [568]. Ganin en a recueilli d’un amas composé
de débris de fruits et de différentes matières végétales entrant en dé-
composition. J'ai observé des larves de Clinodiplosis et de différentes
Lestrémines parmi des feuilles pourries. Quant à Lestodiplosis fusci-
collis Bouché, dont les larves vivaient dans des bulbes pourris de Tulipe
et de Jacinthe, on peut supposer qu’elles y vivaient aux dépens de
larves d’autres Diptères, puisque tel est le genre de vie des espèces
de Lestodiplosis connues.

2° Sur Cryplogames. Les larves de Cécidomyies qui vivent aux
dépens des Cryptogames, sans y produire une cécidie, se répartissent
en mycophages et muscicoles.

A. Larves mycophages. Les unes vivent sur des champignons
épiphytes appartenant aux Urédinées, Péronosporées et Ustilaginées; les
autres se nourrissent de Mucorinées. On n’a jamais observé de ces lar-
ves à l’intérieur des gros champignons, tels que les Agarics et les Bo-
lets (1). Winnertz dit bien qu'il a obtenu d’un Polyporus habité par de

(1) Je viens de trouver, non seulement sur la surface, mais encore dans les
pores de plusieurs énormes Champignons (Boletus confluens), une multitude

(165) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 34)

nombreuses larves d’autres Diptères, une Cécidomyie qu'il à appelée
Diplosis polypori, mais cette espèce, que j’ai obtenue également d’un Pc-
lyporus ligneux, appartient au genre Lestodiplosis et vit à l’état larvaire
de larves de Mycétophilides. Quant à Joannisia pumila Winn., dont
Winnertz a obtenu un exemplaire d’un champignon habité par beau-
coup d’autres larves de Diptères, je suis dans le droit de supposer
qu'il avait les mêmes mœurs que Joannisia fungicola Kieff. dont il
sera question tout à l'heure, puisque Winnertz ne dit pas si la larve,
qui lui est sans doute demeurée inconnue, vivait sur le Champignon,
ou à l’intérieur de ce dernier.

Les larves qui vivent d'Urédinées, de Péronosporées et d’Ustilagi-
nées, forment le genre Mycodiplosis Rbs. C’est à Réaumur que nous
devons la première observation sur une larve de Cécidomyie vivant
d'Urédinées. « Sous les feuilles du Rosier, écrit-il en traitant des
Galles, on voit souvent quantité de bouquets de filets chargés d’une
poussière d’un jaune orangé, semblable à celle des feuilles du Tithy-
male (!) dont nous venons de parler. Dans ces petites forêts de poils
j'ai presque toujours trouvé de très petits vers sans jambes et jaunes,
qui apparemment occasionnent la naissance de toutes ces petites ex-
croissances. Dans certaines places j'ai vu les poils chargés de grains
noirs ; ces grains noirs en sont-ils de jaunes qui ont noirci, ou sont-ils
les excréments des vers? Je l’ignore. J’ai trouvé des vers semblables à
ceux des galles en moisissure du Rosier dans celles des feuilles de
Ronce et de Prunier ».

Winnertz a décrit deux espèces qu'il dit être mycophages et les a
nommées Diplosis caeomatis et Diplosis coniophaga. Il écrit à ce sujet
(816, p. 196] : « Les larves ne lèchent pas seulement le suc qui s'écoule
des amas de spores, mais elles absorbent aussi avec beaucoup d’avi-
dité les spores elles-mêmes et l’on trouve leur tube intestinal tout
rempli de ces spores ». Winnertz s’est trompé doublement ici. Comme
lui, j'ai observé sur les Urédinées des feuilles du Rosier des larves
mycophages rouges, appartenant au genre Mycodiplosis ; à mon grand
étonnement j'en ai obtenu quelques Lestodiplosis femelles; observant
alors plus attentivement les feuilles du même Rosier, j'y découvris
plusieurs larves de Lestodiplosis suçant des larves de Mycodiplosis aux-
quelles elles ressemblaient par la couleur et les dimensions. Diplosis
caeomatis Winn. appartenant au genre Lestodiplosis, j'en conclus que

de larves appartenant à trois espèces différentes de Diplosariae, dont l’une
est Mycodiplosis boleli Kieff. et l’autre Lestodiplosis n. sp.
(1) Euphorbia cyparissias L.

346 J.-J. KIEFFER. (166)

Winnertz a été induit en erreur et que la larve de cet insecte est z00-
phage et non pas mycophage. J'ai fait une observation analogue pour
des larves mycophages de Mycodiplosis tremulae Kieff., servant de
victimes à Lestodiplosis fratricida Kiefr.

Comme Winnertz, Fr. Lôw écrit, en 1888, que « les spores d’Apio-
sporüum pinophilum NS. formaient visiblement la masse noire que l’on
voyait par transparence dans le tube intestinal de la larve » [493]. En-
core tout récemment, en 1899, M. Rübsaamen écrit [642] : « Les larves
de Mycodiplosis se nourrissent des spores de divers champignons pa-
rasites ». Mes observations contredisent celles de ces auteurs; ici en-
core toutes les larves que j'ai observées n’avaient absorbé que des
sucs. Je n'ai jamais pu trouver de spores dans leur tube intestinal. Ce
qui à pu induire en erreur, c'est que l’on trouve, dans le tube digestif
de la larve, des globules de la couleur des spores, mais si l’on se
donne là peine de comparer ces globules aux véritables spores, dont
la larve aura presque toujours quelques-unes sur son corps (!), on
verra de suite la différence. On trouve du reste de ces larves sur des
Erysiphe stériles, n'ayant pas encore de spores.

On a observé des larves vivant d'Urédinées en Europe, en Améri-
que et en Australie. Cobb et OIff les crurent, encore en 189, iden-
tiques à celles de Mayetiola destructor, parce qu'ils les avaient obser-
vées sur la rouille du Blé! [67].

Quant aux larves vivant sur les Mucorinées, toutes celles que j'ai
observées jusqu'ici sont des Lestrémines. C’est ainsi que j'ai trouvé
en grande quantité, les larves de Joannisia fungicola Kieff., sur des
champignons du genre Lactarius entrant en décomposition, mais tous
ces champignons étaient recouverts par une Mucorine, de laquelle les
larves se nourrissaient [323, p. 48]. Un peu plus tard, M. le docteur
Heïm m’envoyait quelques larves de la même espèce, recueillies par
lui près de Nancy, avec la mention : «larves se nourrissant d’une Mu-
corine sur Lactarius piperatus ». Je trouve de temps à autre sur des
Mucorines recouvrant l'écorce des quartiers de bois empilés dans les
forêts, des larves de Lestrémine de grande taille, avec une spatule de
forme étrange ; mais je n’ai pas encore réussi à obtenir l’insecte parfait.
C’est peut-être la même espèce que Vallot a citée en 1849 comme vivant
sur Mucor niveus Vall. recouvrant du bois empilé.

1) J'ai remarqué parfois que plusieurs de ces spores étaient hyalines,
comme si le contenu en avait été absorbé par la larve. On pourrait, dans ce
cas, dire que la larve se nourrit de spores, mais jamais qu'elle absorbe des
spores.

(167) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 347

B. Larves muscicoles. Bremi avait observé entre les feuilles de
Mnium palustre une larve de Cécidomyie qu'il prit pour celle de Cecid.
palustris ; il fit ensuite mention de cette Mousse dans son tableau des
plantes nourricières des Cécidomyies. H. Loew déclara plus tard que
cette plante devait être rayée de la liste des plantes nourricières des Cé-
cidomyies. En effet, le fait isolé d’une larve trouvée sur une Mousse,
n'autorise pas encore à dire qu'elle vivait de cette plante. Néanmoins,
mes observations publiées en 1895 [293]et continuées depuis ce temps,
n'ont convaincu qu'il y à des larves de Cécidomyies qui vivent sur
les Mousses et y trouvent leur nourriture. Qu'’elles absorbent les sucs
de ces plantes ou qu’elles y vivent des animaux microscopiques que
celles-ci abritent, je ne saurais le dire. Ce qui est certain, c’est que
l’on trouve des larves de Cécidomyies de tout âge, fixées aux tiges
des Mousses ou s’y déplacant; elles sont donc réellement muscicoles.
Si je n'avais fait cette observation que sur des larves adultes, j'aurais
pu admettre qu’elles se sont réfugiées entre les Mousses pour s’y mé-
tamorphoser ; c’est ainsi que l’on trouve fréquemment sous les Pins,
les larves de Thecodiplosis brachyntera Schw. entre les folioles d’'Hyp-
num purum; mais cette hypothèse doit être écartée, dès qu'il s’agit de
larves non encore développées, ayant par conséquent encore besoin de-
se nourrir. Ces espèces appartiennent aux Lestrémines et au groupe des
Épidosides, avec des représentants des inévitables genres Clinodiplosis
et Lestodiplosis.

Jai obtenu une Lestrémine, Joannisia palustris Kieff., dont la larve
vivait entre le feutrage qui recouvre le dessous de certaines Hépatiques
(Pellia, Fegatella, Reboulia), ainsi que parmi des Mousses. D’autres es-
pèces, du groupe des Épidosides, ont été observées parmi des Lichens
qui recouvraient le tronc des arbres.

Il. LARVES PHYTOPHAGES GALLICOLES MAIS NON CÉCIDOGÈNES. — Bien des
espèces sont, à l’état larvaire, gallicoles mais non cécidogènes, c’est-à-
dire vivant dans ou sur une galle produite par un autre insecte et se
nourrissant de cette galle; ces insectes sont donc commensaux du
propriétaire légitime. Quant à ceux qui s’introduisent dans une galle
pour y vivre aux dépens du propriétaire, il en a été question quand
nous avons parlé des larves zoophages. Quatre sortes de galles doivent
être mentionnées ici : celles des Coléoptères, des Cynipides, des Mus-
cides et des Cécidomyies.

1° Pour les galles de Coléoptères, je ne connais qu’un seul exemple ;
c’est celui qu'indique Walker : cet auteur a trouvé des larves de Cé-

348 J.-J. KIEFFER. (168)

cidomyies dans des galles de Mecinus collaris sur Plantago maritima
(795, p. 451].

2% Quant aux galles de Cynipides nourrissant des larves de Cécido-
myies, on à observé jusqu'ici les suivantes :

A. Galles d’Andricus fecundatrix L. Entre les folioles de cette ex-
croissance, vulgairement appelée rose du Chône, vivent et se trans-
forment des larves d'Arnoldia gemmae Rbs., comme Giraud l'a déjà
remarqué [185, p. 112] et celles d’un Clinodiplosis dont je n’ai pas
obtenu l’éclosion.

B. Galles de Biorrhiza pallida O1. (terminalis Fabr.). On y trouve
fréquemment les larves de Clinodiplosis biorrhizae Kielf. ainsi que
leur parasite Lestodiplosis Sp.?

C. Galles de Neuroterus lenticularis O1., rarement aussi de N. levius-
culus Schk. et de N. fumipennis Schk., abritant les larves de Clinodi-
plosis galliperda Fr. Low. Par suite de la succion de ces dernières, la
galle prend un tout autre aspect; sa surface inférieure, au lieu de de-
meurer plane, devient concave et le dessus prend une forme irrégu-
lière; la larve du Cynipide périt. Ce fait était déjà connu de Malpighi
(435, p. 425], Réaumur le cite en ces termes : « Entre la feuille et la
surface un peu concave de la galle, il y avait de petits vers oblongs,
de couleur d’ambre jaune, assez semblables par leur figure aux vers
des rebords roulés des feuilles du Tilleul. Ils portent devant eux deux
petits crochets noirs. Sous telle galle en champignons, il y a une dou-
zaine de ces vers et on n’en trouve que deux ou trois et quelquefois
qu'un seul sous d’autres. Au lieu que les autres vers se tiennent dans
l'intérieur des galles, ceux-ci se contentent de se placer sous une galle
qui leur forme un toit épais et solide, au-dessous duquel ils sont bien
à couvert et bien cachés, et c’est apparemment de ce même toit qu'ils
tirent leur aliment, Ils sont de ceux qui doivent se métamorphoser en
mouches à deux ailes; ils sont si petits qu'on à peine à les bien voir
sans une loupe ; il n’est donc pas étonnant que je n’ai pas eu les mou-
ches dans lesquelles ils se métamorphosent. Lorsque j'ai cherché de
ces vers sous leurs galles après la fin de septembre, je n’y en ai plus
trouvé ».

D. Dans la cavité supérieure de la galle d’Andricus grossulariae, Gi-
raud dit avoir observé plusieurs fois « une petite larve de couleur
jaune orangé qui ne nuisait en rien à son propriétaire légitime; ces
larves ont produit, quelque temps après, une petite Cécidomyie. La
présence de cette larve sur des galles de Cynipides est un fait que l’on

(169) Cécidomyides d'Europe et d’Algerie. 349

peut observer chez la plupart des espèces dont la configuration est
propre à leur offrir quelque abri » [A84, p. 358].

3° On connaît aussi quelques galles de Muscides, dans lesquelles on
a observé des larves de Cécidomyies. M. le docteur P. Marchal a obtenu
des galles d'Urophora cardui L. des Cécidomyies ayant les crochets
des tarses simples, les antennes de 2 + 12 articles dans les deux sexes,
l’oviduete avec lamelles, comme chez beaucoup de Diplosides, mais le
bord alaire couvert d’écailles et le eubitus n’atteignant pas la pointe
alaire; elles seront décrites plus amplement sous le nom de Marchalia
cardui Kieff.

En Amérique on à obtenu Lasioptera solidaginis O. S. de galles de
Trypeta solidaginis Fitch et Cecidomyia bigeloviae Cock. de galles de
Trypeta bigeloviae Cock. [69].

4° Mais c’est surtout dans les galles des Cécidomyies que l’on trouve
fréquemment des larves appartenant à des espèces autres que celle du
propriétaire légitime. On admet que ces espèces vivent également du
suc de la plante, mais sans pouvoir produire elles-mêmes une cécidie.
Dans bien des cas on a peine à distinguer laquelle des deux espèces
est l’auteur de la galle. Parfois une même galle peut héberger trois ou
quatre sortes différentes de Cécidomyies vivant toutes aux dépens
de cette galle. C’est ainsi que dans les cécidies de Contarinia acetosae
Kieff. j'ai observé, outre les larves du propriétaire, celles de Perrisia
rubicundula Rbs., d’une Diploside nouvelle, et de Perrisia sp.?; deux
d’entre elles avaient déjà été remarquées par M. Rübsaamen. Parfois
deux espèces, toutes deux cécidogènes, peuventse trouver réunies dans
une même galle. Tel est le cas pour Perrisia tortrix Fr. Lw. et sodalis
Fr. Lw.,que Fr. Lôüw trouva réunis, en Autriche, tandis qu’en Lorraine
je trouve P. sodalis seul dans les cécidies du Prunellier. Il en est de
même de Contarinia lonicerearum Fr. Lw. et de Schizomyia nigripes
Fr. Lw. Cette dernière espèce a été considérée comme commensale de
la première par Fr. Lôw, parce qu’il avait trouvé des galles contenant
les deux sortes d'insectes et d’autres ne contenant que la première
toute seule; or en Lorraine on trouve fréquemment dans les fleurs du
Sureau les larves de Schizomyia nigripes Fr. Lw., et jamais celles de
Contarinia lonicerearum Fr. Lw.

III. LARVES PHYTOPHAGES ET CÉCIDOGÈNES. — La plupart des Cécido-
myies, comme leur nom l’indique, rentrent dans cette catégorie, et pro-
duisent sur les plantes des déformations désignées du nom de cécidies.
Par ce terme de « cecidie », ou de «galle » dans le sens large, nous enten-

300 | J.-J. KieFFEr. (470)

dons non seulement les « galles proprement dites », c'est-à-dire les pro-
ductions closes de toutes parts, et les « galloïdes » ou productions permet-
tant de voir Jes larves par le simple écartement, le déroulement ou le
soulèvement des parties qui les abritent, mais toute déformation d’une
plante, produite par la réaction de celle-ci contre l'invasion d'un para-
site, Les amas de résine que l’on trouve communément sur les rameaux
des Pins et qui renferment une chenille de Lépidoptère, les feuilles mi-
nées par des chenilles ou diversement enroulées par des larves de Co-
léoptères, ne sont donc pas à considérer comme des cécidies, la plante
n’avant été que passive dans ces cas, et n'ayant pas réagi contre l’in-
vasion du parasite. Jetons d’abord un coup d'œil sur les diverses sortes
de cécidies produites sur les plantes par les Cécidomyies; nous parle-
rons ensuite de leur formation. Quant à leur anatomie, il en sera ques-
lion à la suite de la description morphologique que nous donnerons de
chaque espèce en particulier.

19 Apercu des galles produites par les Cécidomyies. Malpighi disait :
« Il n’est point de partie d’une plante qui ne soit susceptible de de-
venir le siège d’une galle ». Cette parole s'applique tout particuliè-
rement aux galles des Cécidomyies, comme nous allons le voir.

A. Fleurs, inflorescence et pétiole (pl. 39, fig. 7; 40, fig. 7;
36, fig. 7). La forme la plus fréquente qui se rapporte à ce cas est celle
d’une fleur demeurant à l’état de bouton, c’est-à-dire ne s’ouvrant pas,
apparaissant plus où moins hypertrophiée, parfois teinte de rouge ou
de violet, ordinairement d’une for me sphérique, ovoïdale ou allongée ;
ovaire et étamines plus ou moins déformés, parfois atrophiés ou nuls.
Ces cécidies s’observent le plus fréquemment sur des Crucifères, des
Papilionacées, des Silénées, des Ombellifères et des Labiées, moins
souvent sur les Balsaminées (/mpatiens noli-tangere), Rhamnées (Rham-
nus), Térébinthacées (Rhus), Amygdalées (Prunus), Rosacées (Poten-
tilla, Rubus), Pomacées (Crataegus), Onagrariées (Epilobium), Cu-
curbitacées (Bryonia), Lythrariées (Lythrum), Grossulariées (Ribes),
Saxilragées (Sarifraga), Caprifoliacées (Sambucus, Lonicera et Vibur-
num), Hédéracées (Hedera), Rubiacées (Galium), Valérianées (Vale-
riana), Dipsacées (Scabiosa), Campanulacées (Phyteuma et Campanula).
Oléacées (Ligustrum), Asclépiadées (Vinceloxicum), Borraginées
(Echium, Symphytum et Myosotis), Solanées (Solanum), Verbascées
(Scrophularia et Verbascum), Antirrhinées (Veronica), Rhinanthacées
(Rhinanthus), Primulacées (Lysimachia), Polygonées (Rumex), Cappa-
ridées (Capparis), Liliacées (Lilium et Hemerocallis) et Dioscorées

(171) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 391

(Tamus). Pour les fleurs des Composées, c’est tantôt tout le capitule
qui demeure fermé et parait renflé, par exemple Senecio, Chrysanthe-
mum, Erigeron, Centaurea, tantôt ce n’est qu'un des fleurons qui est
déformé, par exemple les galles de Rhopalomyia tubifex Bouché et flo-
rum Kieff. sur Artemisia; où encore une paillette du réceptacle est
seule le siège d’une cécidie, par exemple R. palearum Kielf., ou une
partie quelconque du capitule s’hypertrophie, par exemple R. hypogaea
H. Lw. sur Chrysanthemum.

D’autres fois, c’est une galle de forme particulière qui est produite
aux dépens des fleurs : tel est le cas pour les cécidies de Rhopalomyia
tanaceticola Karsch. sur Tanacetum, R. syngenesiae H. Lw. sur Anthe-
mis et Chrysanthemum, Asphondylia Borzi D. St. sur Rhammnus alu-
ternus (pl. 36, fig. 11), et pour les fleurs d'Euphorbia changées en une
sorte de capsule.

Les auteurs de ces galles se répartissent dans les genres Perrisia,
Dasyneura, Schizomyia, Arnoldia, Contarinia, Clinodiplosis, Rhopu-
lomyia et Asphondylia.

Les larves appartenant aux deux derniers genres vivent solitaires
et se transforment dans la galle; celles des autres genres vivent en so-
ciété dans la cécidie et se rendent généralement en terre pour y subir
leur métamorphose.

Le pédoncule d’une fleur peut offrir un renflement diversement con-
formé, uni- ou pluriloculaire, ce qui est le cas pour la galle de Conta-
rinia tiliarum Kieff. (pl. 40, fig. 5). Les Ombellifères offrent fré-
quemment un renflement au point d'insertion des rayons des ombelles
ou des ombellules, plus rarement sur les rayons eux-mêmes; les au-
teurs de ces déformations appartiennent au genre Lasioptera.

Parfois toute l’inflorescence est déformée, et changée tantôt en une
galle spongieuse, irrégulièrement arrondie et multiloculaire, ce qui est
le cas pour les cécidies de Dasyneura sisymbrii Schrk., Rhopalomyia
ptarmicae Vall. et Contarinia ruderalis Kieff. (pl. 35, fig. 3), tantôt en
production ressemblant à un fruit de Houblon, comme cela a lieu pour
les galles de Perrisia ericae-scopariae Duf. (pl. 36, fig. 10), tantôt en
une production couverte de feutrage, par exemple chez Perrisia sca-
biosae Kieff.

Sur Corylus avellana et Quercus pubescens, le chaton est déformé et
renflé quand il héberge des larves de Contarinia. Sur Salix purpurea,
les chatons sont également grossis et couverts d’une sorte de laine blan-

che, quand ils renferment les larves de Rhabdophaga heterobia (pl. 34,
fig. 12, a; et pl. 40, fig. 3).

352 J.-J. KIEFFER. (172)

B. Fruits. Bien des fruits sont déformés quand ils renferment des
larves de Cécidomyies. C’est ainsi que l’on trouve fréquemment, dans
les capitules des Composées, des akènes gonflées et renfermant une
larve de Clinorhyncha.

On trouve de même fréquemment des gousses de Papilionacées, ra-
rement aussi des siliques de Crucifères, gonflées, en entier ou en partie,
par des larves d’Asphondylia, de Choristoneura ou de Contarinia. Les
fruits de beaucoup d'Ombellifères deviennent gonflés et globuleux
quand ils renferment les larves de Kiefferia, d'Asphondylia et de Cli-
nodiplosis. Les graines du Bouleau (pl. 41, fig. 6), et plus faiblement
encore les fruits du Frêne, sont déformés par les larves d’Oligotrophus
ou de Contarinia.

Les petites poires, immédiatement après la floraison, paraissent
bosselées quand elles hébergent de nombreuses larves de Contarinia.
Les fruits d'Euphorbia et de Cerastium peuvent également offrir une
déformation due à des Cécidomyies. Enfin les fruits de Myosotis palus-
tris sont renflés (pl. 36, fig. 8), et diverses sortes de Carvæ ont .
leurs utricules agrandies et grossies, quand elles sont habitées par des
larves de Perrisia.

Dans tous ces cas, la larve vit à l’intérieur du fruit déformé, On con-
nait d'autre part des déformations de fruits, dues à des Perrisia, et où
la larve vit à l’extérieur des graines déformées ; cela a lieu pour les
carpelles de Pulsatilla et de Thalictrum.

C. Feuilles, pétioles et stipules. Chez les Cynipides, toutes les
galles rentrent dans la catégorie des galles proprement dites, c’est-à-dire
des productions closes de toutes parts et ne s’ouvrant pas à la matu-
rité. Pour les galles des Cécidomyies, il n’en est pas de même; la
plupart d’entre elles sont ouvertes, ou imparfaitement closes, ou déhis-
centes à la maturité; un petit nombre seulement sont entièrement
closes. j

a) Galles entièrement closes. L'exemple le plus frappant est celui
d'Oligotrophus Reaumurianus Fr. Lw., dont les cécidies se trouvent sur
les feuilles du Tilleul et renferment une galle interne qui tombe
à terre à la maturité (pl. 40, fig. 1).Je ne connais pas d’autre exemple
d’une galle double et caduque. Quant aux galles simples et closes, elles
sont toutes persistantes. Elles consistent tantôt en une production en
cône allongé, par exemple celles d’Asphondylia rosmarini Kieff. sur
les feuilles du Romarin, tantôt en une hypertrophie du pétiole ou de la
nervure ; pour celles de Rhabdophagasalicis D.G.etde Lasioptera eryngü,
quand elles se trouvent sur les nervures ou sur le pétiole, cette hyper-

(173) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 303

trophie est très fcrte et la cécidie est subligneuse ; pour celles de Con-
tarinia tiliarum Kielf., il en est encore de même, mais elles sont molles
et se dessèchent après la sortie des larves; pour les autres, lhypertro-
phie est moins apparente : telles sont la cécidie de Massalongia rubra
Kieff., sur les nervures des feuilles de Betula, celle de Perrisia n. sp.,
sur les feuilles d’Achillea Millefolium, celles de Rhabdophaga nervorum
Kielf., sur les feuilles de divers Saules, ainsi que celle du pétiole d’Acer
campestre. D’autres espèces produisent, sur le limbe des feuilles, des
renflements de forme irrégulière, par exemple Rhopalomyia hypogaea
Fr. Lw. sur Chrysanthemum leucanthemum.

Les feuilles de la Vigne, celles de diverses Composées, celles de
Buxus, Olea, Phillyrea, Atriplex, Centaurea, Acer, Quercus, Tilia,
Corylus, Betula, Fagus, Fraxinus et Ulmus offrent des exemples de galles
du parenchyme ; la larve est logée dans le parenchyme qui subit une
déformation et une multiplication de cellules. Extérieurement, c’est-à-
dire sur les deux faces de la feuille, on ne remarque d'ordinaire qu’une
tache circulaire jaunâtre ou rougeàtre, de quelques millimètres de dia-
mètre, faiblement convexe ou parfois convexe sur une face et concave
sur l’autre. Les Cécidomyies qui produisent ces galles appartien-
nent aux genres Stefaniella, Perrisia, Cystiphora, Oligotrophus et à
divers Diplosides (pl. 39, fig. 8).

Une déformation assez semblable aux précédentes est la cécidie vi-
trée d'Acer pseudoplatanus et opulifolium. Elle se manifeste extérieu-
rement par une tache à pourtour plus ou moins arrondi, d’un diamètre
de 4 à 7 mill., de couleur d’abord à peine différente de celle du limbe,
à l’exception du centre qui est d'un vert jaunâtre sur le dessus et
blanchätre en dessous; plus tard, en juillet, elles brunissent et se
dessèchent. Comme les galles du parenchyme, elle dépasse à peine la
surface du limbe, et la loge larvaire est située dans le tissu foliaire,
mais ce qui distingue cette espèce, c’est une membrane vitrée et con-
vexe située à sa face inférieure, à l'endroit où elle offre la plus grande
épaisseur, c’est-à-dire au centre. Cette membrane, produite peut-être
par la larve, a un diamètre de 0,16 à 0,22 mill. et parait tantôt hyaline
(sur A. pseudoplatanus), tantôt brune (sur 4. opulifolium) ; dans le pre-
mier cas, elle montre à sa surface 35 ou 40 corpuscules de forme ellip-
soïdale et avant tous le grand axe tourné du même côté [728].

Une autre forme de galles closes et fixées aux feuilles de Carex,
est due à des insectes des genres Hormomyia et Pseudhormomyia, et
offre l'apparence de grains de Blé (pl. 43, fig. 1-3).

Ann. Soc. Ent. Fr., LXIX, 1900. 23

394 J.-J. KIEFFER. 174)

(b) Galles non entièrement closes ou déhiscentes à la maturité. Les
unes forment une production distincte de l'organe qui leur sert de
support et auquel elles paraissent comme insérées, les autres consis-
tent en une déformation du limbe sans former une production distincte
de lui.

Pour celles qui forment une production distincte du limbe, plu-
sieurs cas peuvent se présenter : ou bien ces galles sont munies d’un
opercule qui tombe à la maturité, ou bien elles se détachent elles-
mêmes à la maturité, ou enfin elles s'ouvrent à la maturité sans qu’au-
cune de ses parties se détache de la feuille.

Le premier cas, c'est-à-dire celui des galles munies d’un opercule
situé à la face opposée du limbe et se détachant à la maturité, ne se
présente que sur les Chênes. La forme de ces cécidies est variée : tan-
tôt longuement cylindrique, tantôt hémisphérique ou subeonique, tan-
tôt à peine convexe; toutes sont produites par des insectes du genre
Arnoldia (pl. 38, fig. 4, 2 et 10).

Quant au second cas (pl. 42, fig. 5-7), nous avons deux exemples
bien connus, à savoir, deux galles du Hôtre, situées sur une des
faces de la feuille, tandis qu'à l’autre face leur présence ne se mani-
feste que par une sorte disque. Entièrement closes quand elles sont
fixées à la feuille, elles se détachent à leur maturité, et ont alors une
ouverture circulaire à Fendroit où fut leur point d'attache; chez Mikiola
fagi Hart. , elles sont glabres, dures et presque ligneuses: chez Maye-
tiola annulipes Hart., elles sont molles et feutrées., Les galles coni-
ques et velues des feuilles de Glechoma diffèrent des deux précédentes
par une ouverture fermée par des poils et située à leur base ; après leur
chute, la feuille parait trouée (pl. 42, fig. 6).

La plupart des espèces rentrent dans le troisième cas, étant persis-
tantes et munies d’une ouverture qui devient plus ou moins béante à
la maturité. Nous distinguons de nouveau deux catégories, selon que
cette ouverture se présente sous forme d’orifice circulaire, ou de fente
plus ou moins allongée.

Les galles dont l'ouverture est en forme d’orifice plus ou moins cireu-
laire, sont tantôt fixées à une face de la feuille, avec l'ouverture à leur
sommet, par exemple sur Artemisia, Achillea, Tanacetum ; où bien avec
l'ouverture à la face opposée, et alors leur forme est corniculée, par
exemple les galles de Contarinia subulifex KielT. sur Quercus Cerris, ou
bien globuleuse, par exemple celles de plusieurs Harmandia sur Po-
pulus Tremula, où bien en disque, par exemple celle de Dryomyia cèr-
cinnans Gir. surle Chêne; tantôt elles sont visibles sur les deux surfaces
de la feuille, soit en faisant saillie d’une facon égale sur le dessus et le des-

(175) Cecidomyides d'Europe et d'Algérie. 399
sous du limbe, par exemple les galles de Lasioptera populnea Wachtl,
soit en dépassant un côté de la feuille sous forme d’hémisphère et
l’autre côté sous forme de cône ou de cylindre, ce qui a lieu pour des
galles d’Oligotrophus sur Cornus, Acer tartaricum, Spiraea, Salix,
Ulmus (pl. 35, fig. 8; 41, fig. 7; 42, fig. 8). Quand l'ouverture d’une
galle se présente sous forme de fente allongée, nous nous trouvons en
présence d'une galle en bourse. Leur forme est généralement plus
longue que large, tantôt fortement comprimée en crête de coq, par
exemple chez Dryomyia cocciferae March., tantôt à peine comprime,
ce qui est le cas pour Dryomyia Lichtensteini Fr. Lw. et Æarmandiua
cristata Kieff. Pour celles de Putoniella marsupialis Fr. Lw. sur Pru-
nus, de Perrisia fraæini Kieff. et carpini Fr. LWw., elles sont formées
aux dépens de la nervure médiane, rarement d’une nervure latérale,
tandis que chez Perrisia urticae Perr., elles sont formées tantôt aux
dépens d’une nervure, tantôt aux dépens du limbe {pl. 490, fig. 6: 414,
ho):

Bien souvent la cécidie ne forme pas une produclion distincte du
limbe, mais consiste en une déformation de toute la feuille ou d’une
partie de la feuille. C’est ici qu'il faut rapporter la délormation des ai-
guilles de Pinus quand leur gaine renferme la larve de Thecodiplosis
brachyntera Schw. Outre cet exemple, on peut distinguer cinq formes
différentes, qui sont l'élévation, le reploiement, la crispation, le plisse-
ment et l’enroulement ; toutes ces formes sont accompagnées d’hyper-
trophie, et souvent de décoloration ou de pilosité anormale.

Écévariox. Cette déformation est produite par -une larve qui vit soli-
aire à la face inférieure de la feuille. La suecion de cette larve pro-
voque à la face supérieure une élevation ou bosselure, d’un diamètre
de quelques millimètres, à contour cireulaire et accompagnée d’une
faible hypertrophie et de décoloration; à l'endroit où se trouve l’in-
secte, correspond une concavité. On à observé ces déformations sur
Corylus, Acer (pl. 39, fig. 6), Spiraea, Heracleum. Les auteurs ap-
partiennent aux genres Perrisia, Oligotrophus et au groupe des Di-
plosides.

REPLOIEMENT (pl. 38, fig. 11). Il peut avoir lieu de plusieurs
facons. Parfois une petite partie du limbe est repliée par en haut ou
par en bas, avec une faible hypertrophie et une décoloration. Les
galles de Macrodiplosis dryobia Fr. LW., sur Quercus, et de Perrisia
pteridicola Kieff., sur Pteris, nous en fournissent des exemples. D’au-
tres fois tout le limbe participe à ce reploiement : la nervure médiane
forme charnière; de chaque côté d'elle, une moitié de limbe parait

396 J.-J. KIEFFER. (176)

relevée jusqu'à sa rencontre avec l'autre moitié, de sorte que toutes
deux se touchent ainsi par leurs bords, avec une hypertrophie plus ou
moins grande, et une coloration rouge, jaune ou vert pâle; en réa-
lité, la feuille est restée pliée comme elle Pétait, alors qu'elle se trou-
vait encore renfermée dans le bourgeon. À cause de leur ressemblance
avec les gousses des Papilionacées, ces sortes de déformations seront
désignées ici du nom de galles en gousse. Les Papilionaceées, ainsi que
le Rosier, le Frêne et le Sorbier des oiseaux, sont souvent déformées
ainsi ; dans tous ces cas, c'est la foliole d’une feuille composée qui est
ainsi repliée. Les jeunes feuilles de Betula, Alnus, Quercus peuvent
aussi offrir à leur base un reploiement, mais accompagné de vallé-
cules entre les nervures latérales et n'ayant plus l'apparence d’une
sousse. Tous les reploiements sont provoqués par des Perrisia, des
Macrolabis et des Contarini«.

CrisPATION. Plusieurs insectes appartenant aux genres Perrisia,
Macrolabis et Contarinia produisent sur les feuilles, une crispation ac-
compagnée souvent d’un plissement irrégulier. On peut observer ces
déformations sur Rubus, Ribes, Acer, Quercus, Carpinus, Sorbus,
Tilia, Lamium, Symphylum, Aquilegia, Urtica, Spiraea et diverses
Ombellifères (pl 35, fig. 4).

Puissemexr. Cette déformation consiste en ce que la partie du limbe
qui est située entre deux nervures latérales, est plissée par en haut ou
par en bas, parallèlement à ces nervures ; ces plis sont toujours hyper-
trophiés et souvent décolorés; ils sont provoqués par des Perrisia et
des Contarinia. On les à observés sur Fagus, Carpinus, Acer, Sorbus,
Sanquisorba.

ENROULEMENT (pl. 38, fig. 12). Des enroulements marginaux du
limbe, avec hypertrophie, sont dus à des Hémiptères, à des Hyméno-
ptères, à des Phytoptides et à des Cécidomyies. Les enroulements que
produisent ces dernières se distinguent, de ceux des Hémiptères et des
Hyménoptères, par leur forme moins lâche et plus étroite, mais ils sont
plus lâches et moins étroits que ceux des Phytoptides. Ils se distin-
euent en outre de ces derniers par leur épiderme non ridé, comme
cela a lieu pour les Phytoptocécidies.

L'enroulement d’une feuille est tantôt seulement marginal, tantôt il
occupe tout le limbe. Ce dernier cas est le moins fréquent et se pré-
sente de nouveau sous deux formes : tantôt il à lieu de telle façon que
la feuille offre l'aspect d’un cylindre, par exemple la cécidie de Per-
risia Schlechtendali Kieff. sur Orobus : tantôt chaque moitié du limbe
d’une feuille ou d’une stipule est enroulée depuis le bord jusqu’à la

(177) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 397

nervure médiane et la feuille, ainsi déformée, a l'apparence d'un co-
quillage du genre Cypraea; telle est la déformation produite par Ceci-
domyia Bellevoyei Kieff. sur Lathyrus pratensis.

L'enroulement marginal et partiel, soit involutif, soit révolutif, est le
plus fréquent ; on l’a observé sur Quercus, Populus, Tilia, Salir, Pirus,
Lonicera, Vaccinium, Epilobium, Viola, Solidago, Hieracium, Hype-
ricum, Viscaria, diverses Papilionacées et Pteris. Les auteurs des en-
roulements se rapportent aux genres Perrisia, Macrolabis et Conta-
l'aniux.

D. Vrilles et coussinets. On ne connaît qu'une galle formée aux
dépens d’une vrille, c’est le renflement des vrilles de la Vigne, si-
gnalé déjà par Malpighi, et renfermant une larve de Cécidomyie.

Plusieurs larves pénètrent dans le coussinet d’une feuille et y provo-
quent un renflement peu apparent, qui s'étend aussi aux parties avoi-
sinantes du rameau. Tel est le cas pour les galles de Rhabdophaga pul-
vini Kieff. sur les Saules, et de plusieurs autres espèces sur Abies et
sur diverses crucifères (pl. 3%, fig. 7).

E. Pousses et bourgeons. Les pousses, tant axillaires que ter-
minales, subissent diverses déformations sous l'influence de larves de
Cécidomyies appartenant aux genres Perrisia, Dasyneura, Macrolabis,
Oligotrophus, Rhopalomyia et Contarinia. Outre les cas où ces défor-
mations n’ont pas une forme régulière, par exemple sur Lotus,
Viola, etc., nous pouvons distinguer les formes suivantes.

GALLES EN TOUrFE (pl. 37, fig. 7). Cette forme affecte de préfé-
rence les pousses terminales d’une tige ou d’un rameau. A cet endroit
l'axe de la plante a cessé de croître en longueur, mais s’est étendu en
épaisseur ; par suite du raccourcissement des espaces internodaux , les
feuilles sont agglomérées, généralement agrandies et élargies, parfois
diversement colorées ; elles sont dressées, et forment ainsi une touffe
au fond de laquelle vivent les larves. Ces déformations ont été obser-
vées sur Stachys recta, Campanula, Euphorbia, Origanum, Linaria,
Linum, Lithospermum, Genista, Hieracium, Senecio, Ballota, Stellaria
holostea, Thymus, Cerastium, Erica, Galium, Daphne, Prunus, Juni-
perus, Taæus et Salix. Parfois ces feuilles dressées se recouvrent mu-
tuellement et forment une production fusiforme ; citons comme exemple
la galle de Perrisia terminalis H. LWw. (pl. 40, fig. 8).

GALLES EN TÈTE (pl. 37, lig. 8). Ici encore nous trouvons une
agglomération de feuilles déformées, à l'extrémité d’une tige, d'un ra-
meau, où à l'endroit d’une pousse axillaire ou souterraine, mais ces

358 J.-L KIEFFER. (178)

feuilles ne sont plus dressées, comme dans le cas précédent ; elles sont,
au contraire, incurvées, concaves, se recouvrant l'une Pautre, imitant
ainsi une tête de chou. Cette forme s'observe sur Euphorbia, Arte-
misiu, Achillea, Hieracium, Picris, Conyza, Scabiosa, Hypericum, Ga-
leobdolon, Lamium, Helianthemum, Bryonia, Galium, Lychnis, Thymus,
Erica et Salir. Pour plusieurs espèces cette déformation est accompa-
gnée d'une production anormale de poils formant feutrage.

Parfois les feuilles qui sont recourbées et se recouvrent mutuelle-
ment ne sont plus à distinguer les unes des autres et forment une
masse unique et spongieuse, au centre de laquelle les larves sont ren-
lermées. L'exemple le plus connu est celui de la cécidie de Rhopalo-
myia ptarmicae Vall. sur Achillea ptarmica. On à observé encore de
ces cécidies spongieuses sur Asperula, Erigeron, Thalictrum.

GALLES EN ROSETTE (pl. 34, fig. 2). Cette forme ne diffère des deux
précédentes que par ses feuilles étalées en une rosette au centre de la-
quelle vivent les larves, soit en société, soit solitaires. L'exemple le
plus connu est celui de la cécidie formée par RhabdophagarosariaH. Lw.
sur les Saules et vulgairement désigné du nom de rose du Saule. D’au-
tres exemples sontles galles de Rhabdophaga rosariellaKielf. également
sur le Saule, et les rosettes de Crataequs, Galium, Thymus, Atripler,
Erica.

GALLES EN CÔNE DE PIN (pl. 34, fig. 1). Ces productions ressemblent
aux galles en rosette, dont elles ne différent que par un seul point :
Paxe de la plante à continué à croître en longueur, mais pas autant
qu'à l’état normal; les feuilles déformées sont donc rapprochées les
unes des autres, mais elles n’ont plus un même disque comme point
d'insertion; il en résulte done une déformation qui n’a plus l’aspect
d’une roselle, mais d’un fruit de Houblon ou d’un cône de Pin. Tel est
le cas pour la cécidie de Cecidomyia mediterranea Fr. Lw. sur Erica,
de Perrisia aparines Kieff. sur Galium Aparine,et de Rhabdophaga ro-
saria sur divers Salir.

GALLES DE FEUILLES ACCOLÉES. Dans les quatre exemples précédents,
la cécidie se compose de nombreuses feuilles. Ici au contraire elle n’est
ormée que par deux ou quatre feuilles déformées, qui sont dressées ou
incurvées, mais disposées toujours de telle facon qu’elles se touchent
par leurs bords et forment ainsi une cavité interne occupée par les
larves et par la pousse atrophiée. Cette forme est fréquente : on la
connait de Veronica, Senecio, Stellaria, Glechoma, Teucrium chamae-
drys, Brunella, Thymus, Hypericum, Cerastium, Juniperus, Stachys,
Medicago, Trifolium, Bupleurum; parfois, par exemple sur Salicaria

(179) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 399

Sarothamnus, Achillea, Tanacetum, les feuilles sont soudées ensemble
en forme de tube (pl. 36, fig. 5).

BourGEoNS GRossis. Cette délormation est peu fréquente : le bour-
geon parait grossi et agrandi, mais conserve sa forme quant au reste;
après la sortie des larves, il se dessèche ordinairement. Citons, comme
exemples, des cécidies de Quercus, Carpinus et Larix dues à des in-
sectes des genres Perrisia, Arnoldia et Contarinia (pl. 43, fig. 8).

GALLES ENTIÈREMENT CLOSES. On trouve sur l'Euphorbe, à l’extré-
mité d’une pousse ou à laisselle d’une feuille, une galle en forme de
capsule, fermée de toutes parts, mais dont les côtes longitudinales
font voir qu'elle est constituée par la soudure des quatre dernières
feuilles. Dans d’autres cas il se forme, aux dépens d’une pousse, une
galle ovalaire ou fusiforme et ordinairement charnue: telles sont les
galles de divers Asphondylia sur Sarothamnus, Genista, Cytisus, Co-
ronilla, Doryenium, Ononis, Prunus, Campanula, Artemisia, Juniperus
(pl.:37, fig6:-pls 36, fig: 2et3).

F. Tigeetrameau x. Les déformations produitespar les Cécidomyies
sur la tige ou les rameaux des plantes sont de deux sortes; les unes
sont entièrement closes, les autres s’ouvrant au moins à leur maturité.
Dans le premier cas, elles peuvent être internes, sans qu’elles parais-
sent à l'extérieur, par exemple les galles en grain de blé formées par
Perrisia inclusa Frauenf. à l’intérieur du chaume de Phragmites com-
munis et les déformations du tissu ligneux à l’intérieur des branches
de Saule par Rhabdophaga Pierrei Kieff. Le plus souveni, elles sont
apparentes au dehors et consistent en un repflement de Ja partie atta-
quée (pl. 36, fig. 4: pl. 34, fig. 3, 6 et 10). Sur les plantes ligneuses
on a observé de ces renflements sur divers Saules, où ils sont pro-
duits par Rhabdophaga salicis D. G., saliciperda Duf., dubia Kieff.,
Karschi Kieff.; sur Rubus, dus à Lasioptera rubi Herg.; sur Berberis,
Pirus, Sarothamnus, Phillyrea, Tilia, etc. Sur les plantes herbacées
on les connait de Salicornia, Eryngium, Alyssum, Genista tinctoria,
Atriplez, Inula, Artemisia, elc.; un petit nombre sont souterraines,
consistant en une cécidie du collet de la racine, par exemple sur Chry-
santhemum, Inula et Galium. Beaucoup d'espèces produisent des cé-
cidies sur les tiges des Graminées et des Cypéracées : plusieurs Hor-
momyia et Pseudohormomyia forment à la base des Careæ des galles en
grain de blé ou ovoidales; les Mayetiola vivent sous la gaine des
feuilles de Graminées; les unes y produisent un léger renflement de
la tige, les autres une agglomération de filaments contournés sur Poa
nemoralis et Agrostis lateriflora, les autres enfin une galle en selle.

360 J.-J. KIEFFER. (480)

G. Racines. Je ne connais que trois exemples de galles de Cécido-
myies formées aux dépens d'une racine; tous trois sont de l'Amérique
du Nord. Ce sont les galles de Perrisia rhois Coq., sur les racines
aériennes de Rhus toxicodendron et celles de Cécidomyies non décri-
tes, sur les racines aériennes de deux Orchidées appartenant aux genres
Cattleya et Dendrobium.

2 Formation des galles des Ceécidomyies. Toute zoocécidie est le ré-
sultat de l’action combinée d’un animal sur un végétal. I s'ensuit done
que les conditions qui président à sa formation sont à chercher dans
l'un et l’autre de ces deux sortes d'êtres. Si nous considérons d'abord
la plante, la condition essentielle pour qu'il s'y forme une production
gallaire, c'est que ses tissus soient encore susceptibles de croissance.
C’est le principe fondamental de la cécidologie (1). Malpighi la établi
dès 1679 [435 p. 39], en écrivant que toutes les parties d’une plante
peuvent devenir le siège d’une galle, à la condition toutefois qu’elles
soient encoré à l’état de croissance et que leur tissu puisse ainsi
s’hypertrophier (?)

C’est la même idée qu'exprima plus tard Réaumur : € Quand les Pu-
cerons sucent les feuilles nouvelles du Prunier et par conséquent très
tendres, leurs piqûres obligent ces feuilles à se courber, à se contour-
ner, à se friser. Malgré les piqûres des Pucerons, des feuilles plus
vieilles du même arbre, des feuilles devenues plus fermes, conservent
leur forme, elles restent planes »,. Réaumur à done constaté par là que
dans le cas particulier, il n’y avait pas production de galle, quand lor-
gane attaqué par l’insecte avait atteint toute sa croissance (*).

(1) A l'exemple de M. le docteur Fr. Thomas, j'écrivais autrefois : « céci-
diologie », mais ce lerme, créé par le professeur allemand, frise le barbarisme,
élant composé d’un mot latinisé (cecidium) joint à un mot grec. Voilà pour-
quoi j'ai substitué aux termes de cécidiologie et de cécidiogène ceux de céci-
dologie et de cécidogène.

(2) Popularis exaratorum tumorum morbus, non solas gemmas, folia et
flores afficit, sed reliquas plantarum partes, dummodo vegetando intumes -
cere possint, indiseriminatim tentare solet.

(3) M. le docteur Fr. Thomas, de Saxe, semble avoir ignoré ces observations
de Malpighi et de Réaumur, en revendiquant la priorité pour lui et en rappe-
lant qu'il avait, dès 1872, fait connaître ce principe dans les termes suivants :
« Une production gallaire n’est possible sur une plante que pendant la durée
du développement de la partie attaquée » (Eine Bemerkung zu J. Sachs’ phy-
siologischen Notizen den Fundamentalsatz der Cecidiologie (sic) betreffend.
Ber.der Deutschen Botanischen Gesellschaft, Berlin, 1898, p. 72-74). Bien que

(181) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 361

Une seconde condition, relative au végétal, c’est que toute formation
gallaire exige une plante déterminée et un organe végétal déterminé.
La même Mouche, par exemple un Mikiola fagi, pourra déposer une
partie de ses œufs sur un bourgeon de Charme, et une autre partie sur
un bourgeon ou un rameau de Hêtre; la galle dure et conique ne se
lormera que sur les feuilles du Hêtre, et les larves qui entreront dans
le bourgeon du Charme n'y pourront rien produire, mais elles péri-
ront faute de nourriture. Pour les espèces végétales appartenant au
mème genre, une cécidie qui se forme sur l’une d'elles peut tantôt se
former aussi sur les autres, par exemple le renflement des tiges de
Rubus par Lasioptera rubi Heeg., tantôt au contraire exiger une espèce
déterminée ou plusieurs espèces déterminées, à l'exclusion des autres
espèces du même genre : c’estainsi que les galles des diverses espèces
d'Harmandia se trouvent sur Populus tremula, rarement aussi sur
P. alba, mais jamais sur P. pyramidalis et P. divaricata. Les cécidies
de Macrodiplosis volvens Kieff. et dryobia Fr. Lw. se trouvent en
grande abondance, aux environs de Bitche, sur les jeuilles de Quercus
pedunculata et sessiliflora; je n'ai jamais pu en découvrir un seul
exemplaire sur Quercus rubra, bien que cette espèce de Chêne soit
mêlée aux deux autres.

S'agit-il de genres différents, en ce cas les exceptions à la règle sont
encore moins fréquentes. M. le D' P. Marchal a fait, à ce sujet, une ob-
servation fort intéressante, que nous reproduisons ici ên eætenso.
parce qu’elle démontre encore que des Cécidomyies, à peine distinetes
entre elles à l'état parfait, peuvent cependant différer spécifiquement
les unes des autres. « Tout en reconnaissant la grande analogie qui
existaitentre la Cécidomyie du Blé et celle de l’Avoine, certains caractères
importants, que j'avais constatés au commencement de juin sur les
larves de l’'Avoine, m'avaient empêché d'identifier les deux formes, et
le A1 juillet, signalant à la Société, dans une courte note, les différen-
ces que la larve présentait avec celle de Cecidomyia destructor, je pen-
sais devoir la considérer comme une espèce distincte. Toutelois, lorsque
les adultes vinrent à éclosion, à la fin d'octobre, leur grande ressem-
blance avec ceux de C. destructor me fit douter de l'exactitude de ma
première interprétation. Cette question se posa dès lors de savoir si la
Cécidomyie de l’Avoine était une espèce distincte, ou une variété ca-
ractérisée surtout pendant la phase larvaire, et déterminée par la

cette erreur de M. Thomas eùt été reclifiée en 1897, dans ma Monographie
des Cynipides, M. Rübsaamen la reproduit encore en 1899 (Biologisches Cen-
tralblaët, t. XIX, p. 568).

362 J.-J. KIEFFER. (182)

plante nourriciere, Bien que la seconde hypothèse me parût plus pro-
bable, expérience pouvait seule trancher la question d’une facon défi-
nitive. M. J.-J. Kieffer, auquel je soumis les Insectes à cette époque, me
répondit que, pour lui, la Cécidomyie de lAvoine devait constituer
une espèce nettement distincte, bien que voisine de C. destructor. L'ex-
périence Jui donna entièrement raison.

Le 19 mars, une caisse fut ensemencée presque entièrement en
Avoine, et pour une faible partie en Blé. La caisse fut recouverte d’une
cage de gaze, et de nombreux pieds de Blé secs et bourrés de puparia
de Cécidomyies prêtes à éclore furent suspendus dans la cage; des
éclosions eurent lieu à profusion dans la cage, du 5 au 29 avril. Les
femelles pondirent à la fois sur l'Avoine et sur le Blé, mais elles mon-
trèrent une très grande préférence pour ce dernier: aussi les feuilles
de Blé furent-elles surchargées d'œufs, tandis que sur celles de l'Avoine
ils restérent lort clairsemés. Les larves sortirent des œufs et elles des-
cendirent le long de la tige, sur l’une comme sur l’autre plante, pour
aller se loger sous les gaines foliaires au niveau des nœuds inférieurs:
mais tandis que, sur le Blé, ces larves continuèrent leur développe-
ment, sur lAvoine elles ne dépassèrent pas la taille qu’elles avaient
au sortir de l'œuf, et se desséchèrent au bout de quelques jours. Le
15 mai, tous les pieds de Blé de la caisse, arrêtés dans leur développe-
nent, étaient gonflés de puparia, ou de larves de Cécidomyies com-
plètement développées ; on pouvait en compter jusqu'à 30 et 40 dans
le même pied, échelonnés tout le long de la tige, et certains d’entre
eux éclataient sous leur pression en les laissant s'égrener à terre. Les
pieds d’Avoine, par contre, étaient parfaitement indemnes, aucun ne
présentait trace de la Cécidomyie.

« Une autre expérience sur une caisse qui contenait beaucoup de Blé
et peu d’Avoine donna le même résultat : le Blé fut très fortement en-
vahi; l’Avoine resta indemne. Je mets sous les yeux de la Société deux
photographies faites le 2% mai, qui permettront de se rendre compte
de l'aspect général de ces caisses à cette époque ; on voit que dans les
deux cas le Blé est resté chétif et avorté, atteignant environ le tiers
de la hauteur de l'Avoine.

« L'expérience inverse était aussi à tenter. Une caisse ensemencée de
Blé ei ne présentant que quelques pieds d’Avoine fut recouverte d’une
cage de gaze; des Avoines attaquées y furent introduites et les Diptères
qui sortirent des pupes à la fin d'avril pondirent sur le Blé et sur
l’Avoine, mais en témoignant une préférence pour cette dernière plante.
Le 11 mai, m'enquérant du résultat de cette expérience, je ne trouvai
plus sur aucun pied de Blé trace de la Cécidomyie; sur la plupart des

7

(183) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 363

pieds d’Avoine, au contraire, se trouvaient quelques larves, pelites
encore, il est vrai, mais dont quelques-unes avaient dépassé de beau-
coup Ja taille qu'elles ont au sortir de l'œuf.

« Il résulte de ce qui précède : 4° que la Cécidomyie destructive ne
se développe pas sur lAvoine:; 2 que la Cécidomyie de l'Avoine ne
se développe pas sur le Blé. Ces deux Cécidomyies forment donc deux
espèces distinctes l’une de l’autre ». (Bull. Soc. entom. Fr., 1895, p. 262-
263).

On connait pourtant quelques exemples d’une même espèce de Cé-
cidomyie produisant des galles sur des plantes appartenant à divers
genres d’une même famille. C’est ainsi que Dasyneura raphanistri
Kieff. déforme les fleurs de Raphanistrum, Raphanus, Brassica et
Sinapis. Mais je ne connais aucune Cécidomyie qui produirait des
salles sur des plantes appartenant à des familles différentes.

Généralement la formation gallaire exige un organe déterminé; celle
de Mikiola fagi Hart. n’ara donc lieu que sur la feuille et non sur une
autre partie du Hêcre.

Les exceptions sont cependant fréquentes : La 1'e génération de
Choristoneura sarothamni Kiel. déforme les fleurs du Genêt à Balais ;
la 2°, qui apparait après la floraison, s'attaque aux gousses de cette
plante. Les galles de Rhopalomyia tanaceticola Karsch peuvent même
affecter trois différents organes de Tanacetum, à savoir la fleur, la
feuille et les bourgeons axillaires.

Quant à l'influence de l’insecte sur la production d'une galle, on peut
se demander si elle est due à l’insecte parfait ou bien à la larve. Un au-
teur allemand , le docteur Franck [134, p.537], prétend que la formation
gallaire chez les Cécidomyies n’est pas à attribuer à la larve, mais à
une action de l’insecte parfait au moment de la ponte, et qu’elle est
antérieure à la formation de la larve. Il cite deux observations à l’ap-
pui de son assertion : 4° dans l’enroulement marginal produit par Per-
risia piri B. sur les plus jeunes feuilles de Pèrus cominunis, il ne
trouva que des œufs fusiformes, brunâtres et longs d’un demi-milli-
mètre, fixés à l’épiderme au nombre d'environ dix, alors que des
enroulements un peu plus anciens contenaient déjà de jeunes larves
blanches, longues de 4 mill.

Cette observation repose sans doute suruneerreur. En effet, les jeunes
feuilles du Poirier offrent, à l’état normal, un enroulement marginal
absolument semblable au premier stade de l’enroulement que produi-
sent les larves de Cécidomyies, alors que celles-ci ne mesurent encore
qu'un demi-millimètre. Mais en admettant même que cet enroulement
des plus jeunes feuilles eût été différent de l’état normal d’enroule-

36% J.-J. KIEFFER. (184)

ment marginal que présente les jeunes feuilles avant leur développe-
ment, il nous parait probable que l'auteur n'a pas observé les œuls de
la Cécidomyie.

En effet, les œufs de l'insecte en question sont 1° cylindriques, avec
les bouts arrondis et non point fusiformes; 2° d’un beau rouge et non
point brunätres ; 3° d'une taille inférieure à un demi-millimètre. Il est
en outre probable que, dans le cas particulier, les larves minimes
et hyalines, à peine sorties de l'œuf dont elles ne dépassent pas la
longueur, ont échappé aux observations de Franck.

La seconde observation qui, au dire de l’auteur allemand, serait
encore plus probante, est au contraire encore plus insignifiante et plus
superficielle que la première. En effet, Franck cite le cas des folioles
du Rosier offrant déjà un enroulement cylindrique par en bas, alors
qu'elles ne renferment encore qu'un œuf; or, selon lui, cet enroule-
ment serait dû à une Cécidomyie, Perrisia rosarum Hard., et ne peut
plus, comme dans le cas précédent, être confondu avec l’état normal
de la jeune feuille, puisqu'il a lieu dans le sens inverse du pli qu'offre
la foliole au sortir du bourgeon. Il en conclut qu'il y a donc ici évi-
demment production gallaire à un moment où la larve n'existe pas
encore. Malheureusement pour Franek, l'exemple qu'il cite ne Sap-
plique nullement à une Céecidomyie ; la déformation qu'il a observée
est celle d’une Tenthrédinide, Blennocampa pusilla KI, tandis que
Perrisia rosarum produit un reploiement dans le sens du pli normal
de la jeune foliole, L’argument ne prouve donc rien pour la formation
gallaire des Cécidomyies.

Ajoutons encore qu'il ne vaut pas davantage pour la formation gal-
laire des Tenthrédinides, car chez ces Hyménoptères l'œuf augmente
de volume; la larve qui s’y forme et qui y est visible par transpa-
rence, agit sur le tissu végétal environnant à travers l'enveloppe de
l'œuf, et il s'établit ainsi entre elle et la plante un échange osmotique ;
là formation gallaire ne commence qu'avec celle de l'embryon dans
l'œuf, et s'arrête quand cet embryon périt ou quand on extrait l'œuf.

Il n'existe donc aucune observation prouvant que les galles des Cé-
cidomyies soient à rapporter à une action de l'insecte parfait. Nous
pouvons même aller plus loin et dire : Il est certain que cette pro-
duction gallaire n’est pas à rapporter à l’insecte parfait. En effet, la
Cécidomyie ne peut entamer les tissus avec son oviducte (!), comme

(1) Franck est encore évidemment dans l'erreur quand il veut trouver sur
les galles de Mikiola fagi H., c'est-à-dire d'une Cécidomyie dont l’oviducte se
termine par deux lamelles, les traces de la piqüre que l'insecte parfait aurait

(485) Cécidomyides d'Europe el d'Algérie. 369

nous l'avons vu plus haut pour la plupart des espèces en parlant de
la ponte; d'autre part, l'endroit où elle dépose ses œufs n’est ordinai-
rement pas celui où se forme la cécidie, Il faut donc chercher dans
la larve elle-même la cause de la formation gallaire, d'autant plus que
le développement de la galle est lié à celui de Ja larve et s'arrête quand
celle-ci vient à périr. Mais quelle est cette cause? Est-ce la simple
succion de la Jarve? Ou serait-ce une sécrétion de cette dernière?
Comment se faitil, par exemple, que trois larves, l’une de Mikiola
fagi H., lPautre de Mayetiola annulipes H. et la dernière de fagicola
Kieff., suçcant sur la même feuille de Hêtre, produisent, la re une galle
conique, dure et glabre, la 2° une galle cylindrique, molle et feutrée, et
la 3° un simple plissement du limbe? Pourquoi encore, si des larves
de Mayetiola Joannisi Kieff. et de M. poae Bose. se rendent sous les
gaines d’un même pied de Poa nemoralis, les premières produisent-
elles un simple renflement de là tige, et les secondes cette curieuse
déformation désignée par les anciens auteurs du nom de galles cheve-
lues du Gramen? Personne n’a su l'expliquer jusqu’à présent. Nous
devons donc nous contenter de montrer ici, par quelques exemples, le
mode de ces formations gallaires, tout en avouant que la cause nous
en demeure encore inconnue.

Nous considérerons d’abord deux galles caduques se formant à la
face supérieure d’une feuille; puis deux galles persistantes, traversant
là feuille et une galle à couvercle; enfin un pli foliaire et un enroule-
ment. Après ces galles de feuille, nous donnerons un exemple de la
formation d’une galle de bourgeon et enfin d’une galle de la tige.

1 Exemple. Formation de la galle de Mikiola fagi Hart.
(pl. 44, fig. 2: et 42, fig. 5).

Une des galles les plus communes est celle que l’on trouve sur la
face supérieure des feuilles du Hêtre, et dont la forme est en ovale ou
en cône terminé par une petite pointe. Sa surface est lisse et glabre,
sa couleur rouge ou verdàtre, sa consistance subligneuse, sa longueur
de 6 à 40 mill., sa largeur de 6 à 7 et l'épaisseur de la paroi de 4 mill.
Ellé est à peu près toujours située le long de la nervure médiane ou
d’une nervure axillaire. Voici en quels termes Büsgen [57] explique
sa formation : « Le premier insecte ailé fit son apparition au com-
mencement de mars, d'autres suivirent en très grand nombre pendant

produite au moment de la ponte. D’autres auteurs, par exemple Fr. Thomas,
B. Wagner, elc., sont tombés dans la même erreur, pour des espèces à oviducte
terminé par une pochette ou par deux lamelles.

306 J.-J. KIEFFER. 186)

les quinze jours suivants. La plupart étaient des femelles. L'accouple-
ment eut lieu bientôt après l’éclosion, et la ponte suivit de près (1).
Cette dernière n’a ordinairement pas lieu à proximité de terre, mais
sur un objet situé plus haut et qui, dans le voisinage de l'insecte, se
trouve ordinairement être une branche de Hêtre. Les Diptères volent
vers la lumière et ont l'habitude de se rendre aux extrémités des
branches ; ces deux circonstances font qu'ils se reposent sur les bour-
geons ou du moins très près des bourgeons et qu'ils y déposent leurs
œuls. Une autre circonstance peut concourir à les faire parvenir sur
un bourgeon pour ÿ pondre, c’est que les écailles de ce dernier leur
donnent des points d'appui pour se fixer, mieux que l'écorce du ra-
meau ne pourrait le faire, Il ne peut pas être question d’un instinct
particulier, amenant l’insecte à déposer ses œuis sur le bourgeon de
Hêtre plutôt que sur un autre objet (?). Dans mes bocaux d'observa-
tion je trouvai les œuis aussi bien sur la paroi du verre et sur la
oaze recouvrant les bocaux que sur les jeunes plants de Hêtre (?). Les
œufs sont rouges, longs d’un tiers de millimètre et larges d’un sixième.
Ils sont solitaires ou déposés par groupes, dont les parties sont ali-
ences parallèlement Fune à l'autre... Pendant que celte ponte avait
lieu en captivité, je trouvai au dehors, sur des bourgeons de Hêtre
encore en repos comme en hiver, ou sur le rameau immédiatement
en dessous du bourgeon, des œufs semblables qui venaient d'y
être déposés. L'éclosion des larves sur les Hêtres des bocaux eut lieu
le 4 avril et l’on pouvait aussi trouver à la même époque au dehors,
l'enveloppe de l'œuf vide et les larves à l'intérieur des bourgeons.
Pendant longtemps j'eus peine à admettre que les jeunes larves pus-
sent pénétrer entre les écailles jusqu'à l'intérieur du bourgeon, mais
j'eus bientôt occasion de m'assurer de ce fait. De jeunes larves que
je déposai sur des bourgeons encore parfaitement fermés avaient
disparu en peu de temps, et il me fut possible de les suivre à la loupe
et d'observer comment elles pénétraient. C’est apparemment par crainte
de la lumière qu’elles se réfugient à l’intérieur du bourgeon (*). Sans

(1) Si l'on veut réussir, il faut que les galles aient hiverné à Pair libre.

(2) Mes observations ne me permettent pas d'admettre ces conclusions de
M. le D' Büsgen, comme on peut le voir plus haut, à l'article : Ponte des Cé-
cidomyies.

(3) Ceci ne prouve pas autre chose, sinon que l'instinct porte le Diptère à
ne pas confier ses œufs à de jeunes plantes, ce que confirme l'observation à
l'air libre, comme Büsgen l'a remarqué du reste quelques lignes plus haut.

(4) Je ne crois pas que ce soit le seul molif, car 1° dans ce cas elles devraient
se contenter de se réfugier entre les écailles sans pénétrer plus avant; 2° j'ai

(187) Cecidomyides d'Europe et d'Algérie. 367

doute que ces larves, semblables en cela à beaucoup de plantes et
d'animaux inférieurs, perçoivent la lumière par toute la surface de
leur corps et qu'elles veulent la fuir, Leur rapport avec la lumière est
donc l'inverse de ce qu'il sera plus tard, quand elles auront atteint
l'état d'insecte parfait. Outre cette aversion pour la lumière, un second
facteur, à savoir l’insuccès de tous les essais de succion que la larve
tente sur les écailles, tient l’insecte en mouvement, jusqu'à ce qu'il
soit parvenu aux petites feuilles qui forment l'intérieur du bourgeon.
Celles-ci ont la surface, qui sera plus tard l’inférieure, tournée contre
les écailles et sont disposées de telle facon que leurs nervures latérales
sont placées l’une contre l’autre, dirigées vers le sommet du bourgeon
el à peu près parallèles à ia nervure médiane de laquelle elles sortent.
Le tissu foliaire entre ces nervures forme la profondeur des plis et esl
tout à fait inaccessible aux larves qui viennent du dehors. Le dos des
nervures est couvert de poils rigides, et les petites larves ne trouvent,
pour s’y fixer, d'autre endroit que le parenchyme qui borde immé-
diatement la nervure et qu'elles peuvent encore atteindre avec la
partie antérieure de leur corps. C’est ce qui explique pourquoi les
galles sont situées le long des nervures. Leur disposition sur le limbe
est done une conséquence de la disposition des feuilles dans le bour-
gcon.

« Quand la larve à pénétré ainsi à l’intérieur du bourgeon, le tissu fo-
liaire est encore peu différencié. On distingue néanmoins les deux épi-
dermes; les futures cellules en palissade commencent à s’alionger, tandis
que les autres sont plus arrondies et les nervures montrent quelques
éléments des faisceaux libéro-ligneux. Toutes ces parties sont encore
susceptibles de cloisonnement ». À partir du moment où la larve s’est
fixée et où elle commence à sucer, on remarque les phénomènes sui-
vants :

1% Stade : Formation d'une tache. M. le D' Fockeu, à qui nous de-
vons la première étude du développement de cette galle, mais qui n’a
observé ni la ponte ni les œufs déposés dans les bourgeons, décrit
ainsi la première phase : « Si l’on examine vers la fin du mois de mai

observé des larves de Rhopalomyia palearum Kieff. qui étaient fraichement
écloses d'œufs pondus sur les capitules, les tiges et les feuilles d'Achillea
plarmica et qui voyageaient sur toutes les parties de cette plante sans pé-
nétrer entre les fleurons qui les auraient soustraites à la lumière. Comme
ces tiges étaient desséchées, les larves cherchaïent évidemment une plante
fraiche qui püt les nourrir. Ici encore il faut recourir à l'instinct, si l’on
veut expliquer pourquoi la larve agit de telle facon, plutôt que de telle autre.

308 J.-J. KIEFFER. (188)

la face inférieure des feuilles de Hêtre, onsremarque sur certaines
d’entre elles de petites taches jaune verdàtre, correspondant à une lé-
gère voussure de la feuille vers la face supérieure. C’est au centre de
ces pelites taches, dans le fond des dépressions et à la face inférieure,
que l'on trouve une larve rouge excessivement petite, accolée au
limbe par sa face ventrale. Une coupe transversale de la feuille prati-
quée à ce stade à travers la petite tache en question, montre que la
coloration jaune verdâtre est due : 4° à la diminution des corps chloro-
phylliens contenus dans le mésophylle et, par ce fait, à une altération
locale de ce tissu ; 2 à l’altération cellulosique des parois des deux épi-
dermes » [425, p. 29). Selon Büsgen (L. e., p. 15), cette täche décrite
par M. Fockeu se voit quelquefois, mais pas en règle générale.

> Stade. Formation du bourrelet. D'après M. Fockeu : « La tache
d'un jaune-verdâtre que nous avons signalée au début prend bientôt
une coloration brunâtre. Elle est limitée d’un côté par la nervure prin-
cipale ou secondaire, et de l’autre par une des fines ramifications de ces
nervures. Le parenchyme foliaire et les faisceaux libéraux qui len-
tourent sont en ce point profondément modifiés.

« Dans le parenchyme foliaire se produisent, au niveau de la tache, des
phénomènes chimiques assez complexes qui ont déjà débuté au
Aer stade et dont la manifestation la plus nette est la disparition com-
plète des gros corps chlorophylliens, si abondants dans le parenchyme
normal de la feuille de Hêtre. Les faisceaux libéro-ligneux qui consti-
tuent l'encadrement de la tache brune prennent pendant ce temps un
développement considérable.

« Ce travail hyperplasique, qui apparait d’abord uniquement dans la
maille vasculaire entourant la larve, se transmet bientôt, de proche en
proche, aux fines nervures qui lavoisinent; il en résulte une aréole
lestonnée, de 2 à 3 millimètres de diamètre, formée par des faisceaux
hypertrophiés. II y a en somme, à ce niveau, une augmentation du sys-
tème vasculaire rappelant en tous points le processus anatomique de
réparation qui s’observe en pathologie animale.

€ Jusqu'alors il n’y à pour ainsi dire, dans la feuille, presque aucune
modification histologique; cependant l'accroissement des cellules épi-
dermiques inférieures qui entourent la larve s’accentue davantage, el
cet accroissement détermine en ce point un bourrelet qui finit par en-
tourer la larve. Mais bientôt le parenchyme lacuneux sous-jacent se
cloisonne très activement, le parenchyme en palissade conservant encore
son aspect normal. Les petites cellules ainsi formées sont aplaties trans-
versalement, elles contiennent un noyau et un protoplasma très riche

(189) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 309

en granulations, et leur cloisonnement rappelle tous les caractères d’une
zone génératrice. Cette zone génératrice se développe beaucoup plus
vers la face inférieure et ne tarde pas à former, autour de la larve, une
voûte qui la recouvre complètement en laissant toutefois au centre un
petit orifice qui met la chambre larvaire en communication avec l'exté-
rieur.

« Donc, avant que toute trace d’excroissance soit visible à la face
supérieure de la feuille, la larve se trouve déjà englobée au milieu
des tissus de la plante. Cette portion inférieure n’est pas destinée à
acquérir un plus grand développement; cependant les cellules épider-
miques bordant le petit orifice central s’accroissent encore légèrement
et se prolongent en poils qui tapissent le vestibule d'entrée. L'air peut
facilement pénétrer à travers ce feutrage, mais les parasites parviennent
difficilement à le franchir. »

Englobement de la larve par les cellules épidermiques qui s'élèvent
autour d'elle, formation d’une zone génératrice à l’intérieur des tissus
de la feuille, tels sont les deux phénomènes de la 2° phase du dévelop-
pement. Selon Büsgen, pendant ce stade, la partie postérieure de la
larve émerge de la cavité; selon lui encore, l’absence de grains de chlo-
rophylle et l'hypertrophie des faisceaux signalées par Fockeu n’existe-
aient pas en réalité; mais quand il écrit qu'il ne peut admettre « que
les cellules de l’épiderme croissent dans la surface de la feuille — in
die Blattflache hineinwachsen — et que le parenchyme interne de la
galle soit muni d'ostioles et de cellules subéreuses », je crois qu'il fait
erreur, car je ne trouve rien de semblable dans l’Étude de M. Fockeu.

3 Stade. Émergence de la galle sur le dessus de la feuille. M. Fockeu
distingue encore, avant ce stade, une dissymétrie et une dépression
en forme d’ombilic à la face supérieure (pl. 42, fig. 5, d) : « Du centre
de lombilic fait maintenant saillie un petit mucron qui constituera
plus tard la pointe de la galle adulte. La galle commence par s'ac-
croitre en longueur et prend dès lors un aspect conique. Cette élonga-
tion résulte du cloisonnement ultérieur de la zone génératrice ». Grâce
à ce cloisonnement, la partie de la feuille sous laquelle suce la larve
s'agrandit plus que les parties avoisinantes, et s’allonge nécessairement
par en haut. Elle est donc à considérer, pour me servir de l'expression
de Büsgen, « comme un pli foliaire qui à pris la forme d’un cône et
qui est dû à ce que la surface a subi à cet endroit une augmentation de
croissance ».

Après cette élongation de la galle, qui n’a pas lieu perpendiculaire-
ment à la surface de la feuille mais avee une légère inclinaison, on

Ann. Soc. Ent. Fr. LxIX, 1900. 24

370 J.-J. KIEFFER. (490)

remarque l'accroissement en diamètre; pendant cette seconde période
du 3e stade, la larve est fixée sur les côtés de la galle et non plus au
sommet comme pendant la première. La limite entre Ja galle propre-
ment dite et l'anneau situé à la face inférieure de la feuille est formée
par une zone de parenchyme à cloisons très minces, laquelle permettra
plus tard à la galle de se détacher de son support. La chute de la galle
s'effectue comme pour l'espèce suivante, mais l'empreinte laissée sur
la feuille offre la forme d’une cupule plus grande, de coloration plus
foncée et elle est dépourvue de collerette; le centre est percé d’un ori-
lice extrèmement petit, non visible à la loupe et garni de poils.

2 exemple. Formation de la galle de Mayetiola annulipes H.
(pl. 42, fig. 7).

Ici encore la jeune larve se rend sur le dessous des feuilles et se fixe
à l’aisselle d’une nervure, au milieu d’une des malles vasculaires qui
résultent de la ramification de la nervure principale. La maille vascu-
laire d'insertion n’est donc plus, comme dans le cas précédent, en
contact avec une des nervures principales, ou rarement. Fr. Low
[491] et Fockeu [193] ont décrit la formation gallaire de cette espèce,
mais ils n’ont observé ni la ponte de l’insecte parfait, ni la migration de
la larve. Fockeu que nous allons suivre, en le résumant, distingue dans
le développement de cette galle cinq phases successives.

Le 1 Stade se manifeste par une tache brune accompagnée d’une
dépression de la face supérieure de la feuille. Si lon pratique une coupe
transversale de la feuille de Hêtre à cet endroit, on constate une dimi-
aution dans l'épaisseur du limbe foliaire et une altération locale des
tissus. À ce premier phénomène, que l’on peut à peine considérer
comme faisant partie du développement de la galle, fait bientôt suite
l'apparition de l’excroissance.

> Stade. Tout autour de la larve s'effectue un travail hypertrophique
qui se manileste extérieurement par l'apparition d’un bourrelet annur-
laire assez épais faisant saillie à la face inférieure de la feuille et bien
visible à l’œil nu. Une coupe transversale montre dans le parenchyme
lacuneux un eloisonnement très actif des cellules, allant du centre,
c’est-à-dire de la larve à la périphérie, et par suite, la disparition com-
plète des lacunes creusées au milieu de ce parenchyme. A partir de ce
moment les tissus sont complètement modifiés ; la formation de la galle
commence. On se trouve ici en présence d’une véritable zone généra-
trice. Disposée en forme d’anneau, cette zone génératrice est limitée,
vers l’intérieur, par la loge gallaire elle-même, et elle s'étend à la péri-

(191) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 371

phérie, jusqu'aux faisceaux les plus proches de la feuille, qui s’hyper-
trophient, mais sans faire partie, à proprement parler, de la galle. L’aug-
mentation du bourrelet annulaire qui entoure la larve finit par faire
disparaître celle-ci, laissant au centre un petit orifice dans lequel on
peut à peine introduire une très fine soie (1). À ce moment la cavité
gallaire est à peu près régulièrement sphérique; la jeune larve qui
l’habite est enroulée en boule et la remplit complètement.

3° Stade (?). Voici la larve complètement disparue dans le tissu
ioliaire hypertrophié. Par suite de l’excroissance annulaire formée à la
face inférieure autour de l’orifice de la cavité gallaire, il se forme une
légère incurvation de la face supérieure vers la face inférieure, une
dépression visible à l’œil nu sous la forme d’une tache brunâtre et cir-
culaire. Selon mes observations, cette dépression a un diamètre de 2 à
3 mill., et à l'époque où elle apparaît, c’est-à-dire à la mi-juin, les
galles de Mikiola fagi H. sont parvenues depuis longtemps à leur hau-
teur définitive.

Bientôt le fond de cette sorte de cratère s'élève lentement et se met
au niveau de la face supérieure de la feuille. Que s'est-il passé à l’inté-
rieur des tissus? Le parenchyme en palissade, subissant la poussée qui
lui est donnée de bas en haut par le cloisonnement du parenchyme lacu-
neux, presse contre l’épiderme supérieur qu'il soulève; ses cellules
se cloisonnent activement et deviennent polvédriques. L’épiderme su-
périeur, trop faible pour résister à cette poussée, se décolle du centre
à la périphérie et se sépare ainsi des cellules parenchymateuses. D'autre
part l’épiderme inférieur qui tapisse la cavité gallaire, le canal et la
plus grande partie du bourrelet annulaire, lignifie ses parois. De même
les cellules du parenchyme lacuneux lignifient leurs parois et la zone
scléreuse ainsi constituée forme une sorte de cupule qui englobe la
base de la cavité gallaire, et s'étend, en diminuant d'épaisseur, jus-
qu'aux confins de la maille vasculaire qui entoure l’excroissance. Ce
parenchyme lignifié est analogue à la zone protectrice des galles des
Cynipides ; le tissu protecteur enraye en quelque sorte la marche enva-
hissante de l’insecte à travers la paroi de sa loge; il disparaîtra plus
tard progressivement et ne sera plus représenté, dans la galle adulte,
que par le bourrelet scléreux qui entoure l’orifice.

(1) Plus tard, cet orifice n'est plus en communication avec le dehors et la
galle est complètement close.

(2) C’est à ce stade que se rapporte la fig. 9, pl. 88, t. IT des Mémoires de
Réaumur,

SE 4 J.-J. KIEFFER. (192)

/

2 Stade. Les deux premiers stades n'ont été décrits que par Fockeu
le 3° et les suivants l'ont été aussi par Réaumur, Vallot, Bremi et Fr.
Liw. Deux phénomènes caractérisent cette quatrième phase : 4° for-
mation, à la face supérieure, d’une membrane percée d’un trou en son
centre et ayant l'aspect d’une pupille; 2° amas de poils d’un brun fer-
rugineux sous-jacent à la membrane. Ces poils, qui sont la prolongation
des cellules du parenchyme dénudées par le décollement de l’épiderme
supérieur, ne se ressemblent pas entre eux. Les uns sont minces,
flexueux, pluricellulaires, à parois fines, colorées en brun et se termi-
nant en pointe mousse; les autres sont épais, droits, à pointe fine, à
parois épaisses et résistantes. Is ont chacun un rôle et une destinée
différents. Les premiers, sans consistance, ne tardent pas à tomber; les
seconds, plus résistants, servent pour ainsi dire de levier, en pr essant
sur l’épiderme qu'ils soulèvent; on les retrouve plus tard garnissant
la surface externe de la galle. Cette 4° phase apparait, du moins aux
environs de Bitche, à la fin de juin et au commencement de juillet.
C’est cette forme que Fée a prise pour un Erineum et qu'il a décrite
sous le nom d’Erineum inclusum, dans les termes suivants : « Epiphyl-
lum ; caespitibus sparsis, rotundis, a membranula glauco-albida tectis :
floccis longissimis , intense ferrugineis. Habitat in foliis Fagi silvaticae,
Europae. On trouve au-dessous de la petite membrane blanche, mince
et papyracée, un groupe de filaments très longs, mêlés, fort déliés et
d’une couleur de rouille très prononcée. Cette espèce est anomale ».
(Mémoire sur le groupe des A ti et notamment sur le genre
Erineum, 1834, p. 30, pl V, fig. 4

5e Stade. L'excroissance gallaire émerge du fond du cratère où elle
était primitivement située; Ja fine membrane qui la recouvre, déjà
perforée en son centre, est rejetée de toutes parts et on la retrouve, à
la périphérie de la galle, où elle forme une mince collerette qui se
flétrit au fur et à mesure du développement de lexcroissance. Cette
émergence résulte du cloisonnement de la zone génératrice annulaire
et la galle s'accroît par sa base. Si l'on veut considérer ce phénomène
comme une sorte d’élasticité des tissus, on peut se ranger à l'opinion
de ceux qui considèrent les galles des Cécidomyies comme le résultat
d’une invagination des tissus normaux de la feuille. Mais en réalité les
tissus de l’excroissance gallaire sont des tissus nouveaux, ayant des
caractères propres, absolument différents de ceux de la feuille, de
sorte qu'il parait plus logique de considérer la galle comme une pro-
duction secondaire de la feuille.

Arrivée à sa maturité, la galle se détache de son support : sa partie

(193) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 373

basale qui à la forme d’un cône tronqué et renversé, et qui était en-
foncée dans le limbe, devient visible maintenant et offre une ouver-
ture arrondie à son extrémité. En se détachant, elle laisse sur la
feuille une impression circulaire de la forme d’une cupule, dont le
centre porte un petit cylindre fermé à sa base, auquel la galle adhérait
avant sa chute; le bord de cette cupule est muni de quatre ou cinq
lobes desséchés et réfléchis, qui sont les débris de lépiderme, et sa
face inférieure présente au centre un minime mamelon brunâtre qui
est la cicatrice de l’ouverture primitive.

3e Exemple. Formation de la galle d'Oligotrophus capreae Winn.

Bremi [50, p. 67], Franck [134] et Mik [504] ont décrit sommai-
rement quelques états du développement de celte galle. Fockeu [125],
dont nous allons résumer l'étude, en à décrit toutes les phases de
développement.

Phénomènes antérieurs à l'apparition de la galle. Aucun auteur n’a
observé la ponte de la Cécidomyie en question. Fockeu trouva les
œufs de l’Insecte aussitôt après l'épanouissement complet des bour-
seons, sur la face inférieure des feuilles, fixés aux poils qui garnissent
le dessous du limbe. L'interprétation donnée par Franck, d’après la-
quelle la larve pénétrerait dans les tissus, est fausse, comme le remar-
que Fockeu. Les jeunes larves, de forme ovoïde, avec une légère proé-
minence à la partie antérieure et une segmentation distincte, exécutent
des mouvements très lents, et rampent à la surface de la feuille sans
s’'écarter beaucoup de certains points; ce sont surtout des mouvements
de rotation qu’elles effectuent. Ces phénomènes s’observent surtout
au début, aussitôt après l’éclosion ; on peut alors détacher facilement
les larves de la feuille avec l’extrémité d’un pinceau ou d’une fine
aiguille.

Elles ne contractent pas d’adhérence avec la feuille et celle-ci ne
présente aucune lésion, même épidermique.

Plus tard, on trouve les larves fixées au point ou apparaitront les
galles et leur aspect a changé. Elles sont plus globuleuses, comme en-
roulées en boule, et leur proéminence antérieure parait effacée. Il est
difficile alors de les détacher de la feuille. Elles sont au repos et fixées
par leur extrémité antérieure à l’épiderme de la feuille; on ne peut
même pas les en séparer sans léser cet organe, les fines pièces buc-
cales de l'animal étant engagées au milieu des cellules épidermiques.

Dès ce moment, la vie et le développement de la jeune larve sont
intimement liés à l'accroissement de la feuille.

374 J.-J. KIEFFER. (194)

Voyons maintenant comment la plante réagit contre la présence du
parasite à sa surface. Tout d’abord on peut facilement remarquer, en
détachant la larve, qu’elle à produit une lésion toute locale des cellules
épidermiques. Cette lésion, qui parait être la cause primordiale et le
début de la galle, consiste en une excoriation, une dénudation de Ja
cuticule des cellules, dont le protoplasma jeune sert de nourriture à
la larve, La lésion primitive ne porte que sur une ou deux cellules
épidermiques, mais son action se transmet, de proche en proche, aux
cellules voisines, sur un espace équivalant aux dimensions de la jeune
larve. Ces dernières cellules ne sont pas excoriées, ni vides de pro-
toplasma, mais elles manifestent un certain degré de mortification qui
se traduit surtout par la disparition de la chlorophylle et la cutinisa-
tion plus complète de la paroi externe. Il en résulte une tache jaune
sous-jacente à la jeune larve qui, à ce moment, est gorgée de nourri-
ture, renflée en boule, la partie antérieure engagée au milieu des cel-
lules épidermiques.

Cette tache jaune n’est pas à attribuer au simple contact de la larve,
car si on détache celle-ci de sa place primitive pour l'appliquer en un
point nouveau, il ne se produit plus de coloration épidermique sous
elle ; cette décoloration est du reste toujours postérieure à la lésion.

La décoloration de l’épiderme est bientôt suivie par le décollement
de ce tissu au niveau de la tache jaune. L'épiderme se détache des
tissus sous-jacents dont il ne peut suivre l’accroissement. A ce stade
commence véritablement la production objective de la cécidie, les
phénomènes précédents ne se manifestant par aucun épaississement
des tissus ni aucune voussure de la surface.

Point d'insertion de la galle. La galle d'Otigotrophus capreae S'insère
au voisinage des nervures, surtout des nervures secondaires. Cette
localisation est à peu près générale dans toutes les cécidies foliaires
des Cécidomyies. La larve qui se fixe sur la feuille n’a qu’un but,
c’est de chercher sa nourriture. Elle est guidée, en cette circonstance,
par l'instinct et s’installe là où elle a chance de trouver le maximum
de nourriture, au voisinage des régions qui sont chargées spécialement
de faire circuler la sève. Le plus souvent, la galle occupe le centre
d'une des fines mailles vasculaires formées par les nervures tertiaires.

Apparibion el développement de la galle. Le décollement de l'épiderme
inférieur en contact avec le corps de la larve, précède done la formation
de la galle ; celle-ci n’est pas une production épidermique, elle procède
du mésophylle de la feuille. L'épiderme décollé est percé d'un petit
orifice pupillaire. Au point correspondant à cet orifice, le tissu sous-

(495) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 379

épidermique est entamé par la larve qui a exercé son action jusqu'aux
cellules du parenchyme en palissade les plus externes. Ces dernières
sont en effet vides de protoplasma et complètement dépourvues de
chlorophylle.

La lésion portant sur les cellules du parenchyme lacuneux parait
être le vrai point de départ de l’exeroissance gallaire. Aussitôt après
le soulèvement de l’épiderme inférieur, les cellules du parenchyme
lacuneux immédiatement en contact avec le tissu sous-épidermique
se cloisonnent activement et forment une zone génératrice annulaire
au pourtour de la larve. Le cloisonnement de ces cellules, qui présente
son maximum d'intensité au centre, va en diminuant vers la péri-
phérie. La région centrale entourée par la zone génératrice est formée
par les cellules du parenchyme lacuneux en voie de mortification qui
servent de nourriture à la larve et qui ne sont nullement susceptibles
de se cloisonner.

Il résulte de la forme même de la zone génératrice et de son mode
de cloisonnement qui s'opère vers la face inférieure, que ce tissu de
néolormation finit par entourer complètement la larve. La galle est
alors visible à l'extérieur sous la forme d’une éminence discoide faisant
saillie à la face inférieure de la feuille. En s’accumulant autour de la
larve, les cellules génératrices ne forment pas une cavité complètement
close, mais elles limitent un orifice infundibuliforme donnant accès
dans un pertuis qui met en communication la chambre larvaire avec
l'extérieur. Dans la suite du développement, les parois du pertuis se
rapprochent tellement qu'elles finissent par se toucher et que la galle
parait complètement close ; mais en réalité il existe toujours une solu-
tion de continuité entre les cellules adjacentes de ce canal, comme on
peut s’en rendre compte sur des coupes longitudinales passant par
l'axe de la cécidie. L’orifice infundibuliforme qui préeède le pertuis
constitue une sorte de chambre, que Mik n’a nullement considérée
comme une seconde chambre larvaire, ainsi que l’écrit M. Fockeu (1).

Le cloisonnement de la zone génératrice s'effectue d’abord vers la

(1) La descriplion morphologique que Mik donne de la galle concorde avec
mes observations, avee celle seule différence que la cavité externe est beau-
coup plus pelite que la cavité interne ou chambre larvaire. La paroi qui se-
pare les deux cavités et qui touche parfois l'orifice circulaire et bordé de
rouge, rendant alors la cavité externe à peine sensible, est évidemment ce que
Bremi appelait « une membrane lisse, brillante, verdâtre et demi-transpa-
rente qui recouvre le sommet de l’excroissance comme un tympan... el qui
disparait à la maturilé en laissant à l’insecte une ouverture circulaire comme
porte de sortie ».

376 J.-J. KIEFFER. (196)

face inférieure de Ja feuille seulement. C’est ainsi que se trouve formée
la première région de la galle, bien avant que toute trace d’excrois-
sance ne soit visible sur la face supérieure.

Au pourtour de la galle existe un bourrelet qui fait saillie à la face
supérieure surtout et se traduit, sur les coupes transversales, par deux
élévations qui circonscrivent les tissus gallaires. Ce bourrelet se pro-
duit, dès le début, pendant le cloisonnement de la zone génératrice, et
joue un rôle très important dans le développement de la galle. Il ré-
sulte de l’hypertrophie des fines nervures qui avoisinent le point d’in-
sertion de la galle.

Quant à la partie supérieure qui constitue le fond de la cavité gal-
laire et qui est beaucoup moins importante, elle résulte en partie du
cloisonnement du parenchyme en palissade. Les cellules de ce tissu
se segmentent activement après avoir perdu leur chlorophylle. Dès ce
moment la galle a acquis ses caractères morphologiques définitifs. Elle
fait saillie inégalement des deux côtés de la feuille et son développe-
ment dépend de laccroissement corrélatif de l'organe sur lequel elle
est insérée.

Le stade suivant est caractérisé par la différenciation des tissus gal-
laires et surtout par le développement d’une zone protectrice qui Jinite
vers l'extérieur les tissus tendres de la feuille. Cette zone protectrice
résulte de la lignification des parois des cellules les plus superficielles
et par conséquent les plus anciennement produites par la ligne géné-
ratrice.

La lignification des parois de ces cellules se produit en même temps
que celle de la gaine protectrice des faisceaux ; ces deux couches ont
entre elles des relations évidentes. C’est d’abord vers la face supérieure
que s'effectue ce processus anatomique: il se forme de la sorte une
lentille scléreuse, peu épaisse, à concavité inférieure, disposée immé-
diatement en dessous du tissus sous-épidermique.

Vers la face inférieure, cette zone est beaucoup plus épaisse et vient
tapisser l’orifice de la galle. La zone protectrice une fois produite, la
cécidie ne peut plus s’accroîitre, son développement s'arrête et sa
structure reste identique jusqu’à la mort de la galle.

Cavité larvaire. La chambre larvaire passe par différentes phases
pendant le développement de la cécidie. Au début, elle est largement
ouverte et limitée par l’épiderme inférieur à peine modifié. Elle a, à
ce moment, la forme d’une cuvette, au fond de laquelle vit la larve
nullement protégée par les lissus foliaires qui ne sont pas encore
hypertrophiés. Plus tard, par suite du cloisonnement de la zone géné-
ratrice, les bords de celte cuvette se rapprochent et la larve est complè-

(197) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 371

tement enfermée dans une cavité dont les parois se moulent sur son
corps. L’hypertrophie des tissus continuant à se produire, la loge
gallaire se trouve prolongée par un mince canal dont les bords sont
accolés l’un à l’autre et qui s'ouvre à l'extérieur dans un infundibulum
assez vaste, A ce stade la larve n’est plus en communication directe
avec l'extérieur. L'air lui arrive néanmoins du dehors en pénétrant
dans l'intervalle des cellulles qui bordent le conduit gallaire.

Selon Fockeu, c’est en détruisant les cellules de la couche nutritive
puis celles du conduit gallaire que la larve quitte sa prison végétale
pour se métamorphoser. Voici ce que j'ai remarqué à ce sujet. La
larve, dont Mik écrit qu’elle quitte la galle dans la seconde quinzaine
d'août, demeure au contraire, du moins aux environs de Bitche, ren-
fermée encore dans les cécidies paraissant complètement closes, jusqu’à
la mi-novembre, c’est-à-dire tant que les feuilles sont encore vertes ;
or, dès la fin d'août ou le commencement de septembre, les larves
avaient atteint leur croissance normale et avaient donc cessé de prendre
de la nourriture. Ce fait semble déjà indiquer que la larve ne détruit
pas elle-même la paroi qui la sépare du dehors, mais qu’elle attend
que la dessiccation de la feuille amène cette destruction. Ce quile prouve
suffisamment, c’est l'observation suivante. Le 18 octobre j'avais cueilli
sur un même arbre un certain nombre de feuilles de Saule couvertes
de galles encore fermées. Une partie de ces feuilles fut laissée à Pair
libre pendant une journée, tandis que les autres furent renfermées
dans une boîte en fer-blane qui empêchait leur dessiccation. Le résultat
fut que toutes les galles des premières feuilles, c’est-à-dire de celles
qui s'étaient desséchées à l'air libre, paraissaient maintenant complète-
ment ouvertes: celles des secondes étaient demeurées fermées. Jai
renouvelé sur d'autres feuilles la même expérience avec le même ré-
sultat. C’est donc à la dessiccation de la feuille et non à l’action de la
larve qu'il faut attribuer la cause de ouverture de la galle.

4e Exemple. Formation de la galle de Harmandia cristata Kiefr.

Selon Fr. L5w [411, p. 160], la femelle de cette Cécidomyie dépose
ses œufs en avril sur la face supérieure des feuilles du Tremble sortant
du bourgeon. Les petites larves qui éclosent bientôt se rendent à une
nervure secondaire et y produisent, par leur succion, une hypertro-
phie de forme particulière. Comme cette hypertrophie atteint son maxi-
num d'intensité sous la larve, il en résulte, à la face opposée de la
feuille, une éminence un peu plus longue que large ; en même temps
l'endroit occupé par la larve s'enfonce et finit par descendre au-

378 J.-J. KigFFER. (198)

dessous du niveau du limbe, de sorte que l’insecte paraît maintenant
logé dans un enfoncement en forme de maie. Cependant les bords de
cetenfoncement continuent à s’hypertrophier; ils s’allongent par-dessus
le dos de la larve et finissent par se rejoindre en emprisonnant com-
plètement cette dernière. Une fois arrivée à maturité, la larve cessant
de prendre de la nourriture, cesse aussi d'agir sur la plante et d'attirer
la sève dans la galle; celle-ci commence par suite à se dessécher, et
comme cette dessiccation se fait d’abord sentir aux parties supérieures
et moins épaisses de la galle, il en résulte que les deux bords qui s’é-
laient rejoints par-dessus la larve se séparent de nouveau lun de
l’autre et forment ainsi une ouverture en lente, par laquelle la larve
pourra quitter sa prison, pour aller subir sa métamorphose en
terre.
>° Exemple. Galle d’Arnoldia cerris Koll.

Giraud à publié, sur cette espèce, l'observation suivante : « Le 9 mai,
je me rendis sous l'arbre infesté, l'année précédente, par ce petit Di-
ptère ; j'eus le même spectacle qui s'était déja offert à Kollar, plusieurs
années auparavant. Des millions de ces animaleules couvraient le
sazon qui commençait à pousser sous l'arbre, ou voltigeaient sous les
branches basses, évidemment très occupés de laccouplement. En
portant mes regards sur les branches, j'en vis beaucoup d’autres posés
sur les feuilles, paraissant plus tranquilles, mais non oisifs : c’étaient
des femelles occupées à leur ponte. J'en suivis les mouvements et
je m’assurai que cet acte s’opérait rapidement et que la même mère le
repélait souvent sur la même feuille. Je cueillis un certain nombre de
ces feuilles encore très petites et à peine épanouies, sur lesquelles J'a-
vais vu travailler le plus grand nombre de Diptères, et les transportai
chez moi pour les examiner à la loupe. Cet examen me démontra que
les œufs, déjà déposés en grand nombre, étaient simplement engagés
dans le duvet des jeunes feuilles et jamais dans leur parenchyme. Is
ressemblaient d'ailleurs à ceux des Cécidomyies en général.

Dès la fin de mai ou au commencement de juin, les nouvelles galles
commencent à se montrer sous la forme de très petits points pâles qui
se couvrent bientôt d'une pubescence blanche. Leur développement
est fort lent ».

6° Exemple. Galle d'Oligotrophus fagicola KielT.

Comme Fr.Lôw l'a observé [414, p. 156], on trouve au printemps sur
la face supérieure des jeunes feuilles de Hêtre, dès que les bourgeons
se sont ouverts, les minimes larves récemment écloses d'Oligotrophus

(199) Cécidomyides d'Europe et d’Algerie. 379

fagicola. Les nervures secondaires, sur lesquelles les larves se sont
fixées, commencent à s’hypertrophier, ainsi que la partie avoisinante
du limbe. Le pli dont la nervure secondaire formait le fond, alors que
la jeune feuille était encore renfermée dans le bourgeon, ne disparait
pas quand le limbe se développe; tout au contraire, ses bords qui par-
ticipent à l'hypertrophie, se rejoignent l’un l'autre, de facon à fermer
la cécidie. Ces plis qui sont ordinairement à plusieurs sur une feuille
et dont la longueur occupe la moitié, parfois la totalité de celle de la
nervure, ne forment pas carène à leur face inférieure, mais un de leurs
côtés est appliqué à la feuille, dans la direction du pétiole. Arrivées à
leur maturité, les larves qui vivent en société dans ces déformations,
et non solitaires comme le dit Fr. Low. cessent d’agir sur le tissu fo-
liaire qui commence à se dessécher à sa partie la plus éloignée des
larves, c’est-à-dire à l'endroit où les deux bords du pli se touchent:
il en résulte que ceux-ci se séparent et permettent ainsi la sortie des
larves. Verte au début, la cécidie prend ensuite une teinte jaune, puis
rouge, pour se dessécher complètement plus tard, quand les larves
l'ont abandonnée.

7° Exemple. Galle de Perrisia marginemtorquens Winn.

Selon Fockeu, que nous allons encore suivre iei ({. c., p. 100-106), la
ponte de cette espèce a lieu en mai dans les bourgeons de Salir vi-
minalis. L'insecte dépose ses œuis entre les écailles, sans les fixer par
une matière agglutinante et sans produire de piqüre. Les premiers
vestiges de la cécidie apparaissent une quinzaine de jours après l’épa-
nouissement des bourgeons et coïncident avec l’éclosion des œuis, La
jeune larve, aussitôt éclose, se fixe à la face inférieure des feuilles et
sur les bords; à la face inférieure, probablement à cause des poils
qui garnissent la feuille de ce côté et qui lui servent de point d’at-
tache, la face supérieure étant absolument glabre:; sur les bords, parce
qu'elle trouve en cette région un abri naturel, le bord de la jeune
feuille étant normalement recroquevillé vers la face inférieure.

La présence de la larve à la surface du limbe se traduit d’abord par
une certaine décoloration : la feuille est décolorée à ce niveau par
le fait de la disparition de la chlorophylle qui est remplacée par de l'a-
midon, En dehors de cela on ne constate aucune autre modification
histologique ni dans l’épiderme inférieur ni dans les parenchymes, et
les sloniates ne présenient pas non plus de changement de structure.

Au stade suivant, on constate l’enroulement du limbe qui ne com-

380 J.-J. KIEFFER. (200

mence pas avant que la larve ait atteint une certaine laille équivalente
à peu près au tiers de sa taille définitive.

L'enroulement du limbe foliaire vers la face inférieure résulte de
l'augmentation de calibre des cellules du parenchyme en palissade et
de l'épiderme supérieur, par un processus analogue, en partie du
moins, à celui que l’on observe dans l’enroulement marginal pro-
duit sur les mêmes feuilles par un Phytoptide, Cecidophyes truncatus
Nal. Chaque cellule grandit pour son compte, mais ici le bord de la
feuille ne subit aucune élongation. Les tissus gallaires sont formés par
les tissus foliaires modifiés pendant leur développement; il n’y à à
aucun moment formation d’une zone génératrice. Il en résulte que les
feuilles qui sont ainsi enroulées paraissent plus étroites que les autres,
leur propre substance contribuant à former l’enroulement marginal.
Cette différence est la caractéristique essentielle de ces deux espèces
d’enroulements. Dans l’acarocécidie, il s'établit une zone génératrice
subterminale, parce que les tissus situés entre le faisceau le plus proche
du bord de la feuille et le sclérenchyme marginal se transforment
en méristème; le cloisonnement de cette zone génératrice produit la
cécidie; la feuille subit un accroissement dans le sens du limbe; cette
élongation est visible à la loupe et même à l'œil nu, parce que les den-
ticules du limbe sont modifiés dans leur disposition régulière, l'un
d'eux estremplacé par un méplat légèrement épaissi, correspondant au
faisceau hypertrophié.

L'enroulement produit par la Cécidomyie se complique d'un autre
phénomène qui se produit en même temps et qui se traduit par l'irré-
gularité du galloide. L'augmentation des cellules du parenchyme en
palissade et des cellules épidermiques atteint, en effet, son maximum
aux endroits qui sont en contact avec la larve. Or un même galloïde
peut renfermer plusieurs larves alignées les unes à la suite des autres;
il s'ensuit qu'il se produit une série de bosselures séparées par des
dépressions.

Comme la feuille grandit en même temps que la larve se développe,
et que la cécidie s’accroit simultanément, il faut donc, dans le dévelop-
pement de cette dernière, tenir compte de deux facteurs : l’accroisse-
ment propre des tissus foliaires, et l'accroissement local exagéré des
cellules en contact avec la larve cécidogène.

Quand l’enroulement renferme plusieurs larves, on peut dire en
somme qu'à chaque larve correspond une cécidie qui se traduit à l'ex-
térieur par un renflement, Entre les différents renflements existe une
dépression, et dans cette dépression, le limbe n’est pas modilié au

(201) Gécidomyides d'Europe el d'Algérie. 381

point de vue histologique, mais coloré en rouge lorsque la cécidie est
arrivée à maturité.

8 Exemple. Formation de la galle d'Asphondylia ononidis Fr. Lw.

L’oviducte des Asphondylia parait apte à perforer un tissu. Néan-
moins, d’après les observations de Fr. Lôw (1. e., p. 161), Asphondyliu
ononidis n'entame pas plus que les autres Cécidomyies le tissu de la plante
à laquelle ses œufs sont confiés (1). Au moyen de son oviducte long et
grêle, cet insecte peut déposer un œuf à l'intérieur d'un bourgeon,
sur là jeune feuille en voie de formation, c'est-à-dire à l'endroit où
s'insèrent les deux stipules. Celles-ci s'hypertrophient, se courbent, et
leurs bords se soudent les uns aux autres, tandis que la feuille elle-
même cesse de se développer davantage. Il en résulte une galle ovoï-
dale entourant la larve et couronnée par la minime feuille arrêtée
dans son développement.

9% Exemple. Formation de la galle de Mayetiola poae Bose
(pl. 43, fig. 10-11).

Prillieux [582] et Beyerinek [24] ont suivi le développement de cette
cécidie. Franck à reproduit plus tard les observations de l’auteur
français, mais sans rien y ajouter. Ici comme chez les autres Mayetiola,
l’insecte dépose ses œufs sur la face supérieure des feuilles de Ia Gra-
minée (Poa nemoralis), et toujours sur la nervure médiane, de telle
facon que leur grand axe est parallèle aux nervures. Les jeunes larves
se rendent de là à la gaine, et parcourent ainsi une distance de 10 à
20 centimètres. Elles s'arrêtent sous la gaine, immédiatement au-des-
sus du nœud de la tige et s’y fixent. Le phénomène le plus remarqua-
ble qui apparait maintenant dans la formation gallaire, c’est que cette
formation ne commence pas autour de la larve, mais à une distance
notable d’elle, sous forme de renflement en arête. Ce renflement est
produit en majeure partie par les cellules épidermiques qui s’agrandis-
sent. Un peu plus tard, les cellules sous-épidermiques prennent part à
cet accroissement et la déformation s'étend sur une longueur de 4 à
2 centimètres. En cet état, elle présente des bords lobés et un peu in-
curvés. Quant à la larve, elle demeure immobile et parait comme
collée à l’'épiderme par un liquide gluant. La gaine ne tarde pas à se

(1) J'ai observé que Schizomyia galiorum Kieff., dont l’oviducte paraît
également apte à perforer un tissu végétal, n'entame pas davantage les fleurs
de Galium auxquelles elle confie ses œufs.

J82 J.-J. KIEFFER. (202)

fendre, et par cetie déchirure sortent des filaments qui, en se recour-
bant, l’enveloppent elle-même en même temps que la tige. Par suite
du développement des filaments, la gaine se trouve rejetée sur la
partie de la tige opposée à celle en face de laquelle s'était produite la
fente. Aussi la voit-on repoussée sur un des côtés du chaume aux pa-
rois duquel elle ne touche que par les bords de sa déchirure. Celle-ci
ne se fait pas indifféremment sur un point quelconque de la gaine,
elle se produit toujours à sa face ventrale. Il en résulte que la gaine
se trouve placée vis-à-vis de la paroi de la tige qui correspondait à sa
partie dorsale. Entre elle et la tige existe toujours un intervalle, c’est
là qu'est l’insecte, et l’on peut considérer l’espace qu'il occupe comme
constituant une sorte de loge insectifère, dont les parois sont formés
d'un côté par la gaine et de l’autre par la tige.

Quand on observe seulement à l'extérieur la masse des nombreux
lilaments qui lient la gaine contre la tige, on peut croire, au premier
abord, qu'ils naissent uniquement de la face de la tige, opposée à celle
où est logée la larve, mais si on fait une coupe transversale, on voit
aussitôt que de pareils filaments naissent de toute la surface de la tige,
hormis l'endroit où est l'insecte, c’est-à-dire de tous les points qui ne
sont pas couverts par la gaine. Il n’est pas rare cependant de voir
quelques filaments ramper contre les parois de la partie de la tige
située à l'intérieur de la loge. Comme ces filaments se recourbent tous
vers la gaine. ils se recouvrent les uns les autres, et ainsi ceux qui
naissent du point opposé à celui où est la loge sont au-dessus des
autres, les cachent à la vue et apparaissent seuls à l’extérieur.

Selon Prillieux, les auteurs qui ont assimilé ces filaments à des ra-
cines ont basé leur opinion sur la considération de leur position auprès
des nœuds et de leur aspect extérieur. Or, d’une part, ces filaments
ne naissent pas au niveau même des nœuds, comme cela à lieu pour
les racines, mais le plus souvent à une hauteur de ? à 10 millimètres
au-dessus. D'autre part la structure de ces filaments est différente de
celle des racines : les filaments renferment au centre un faisceau de
fibres à parois épaisses el ponctuées, qui émanent de la tige et sont
semblables à celles de la tige, mais ce faisceau ne contient ni cellules
médullaires ni vaisseaux en son centre; les racines montrent également
un faisceau fibreux constitué des mêmes éléments que celui des fila-
ments, imais on voit au centre de ce faisceau quatre ou cinq tubes
ponectués fort gros. Prillieux en conclut qu'une pareille différence ne
peut permettre d'identifier les filaments avec les racines.

Beyerinck prouve au contraire que ces filaments, de formation en-
dogène, sont à considérer comme des racines adventives, parce qu'ils

(203) Cocidomyides d'Europe et d'Algérie. 383

sont capables de remplir les fonctions des véritables racines. L'auteur
hollandais coupa une tige immédiatement au-dessous de l'amas de fila-
ments et la planta ensuite en terre. Or les filaments se mirent à croitre
comme des racines ordinaires, et à l’aisselle de la feuille en contact avec
la galle il se forma une pousse nouvelle,

IV. Les œufs des Cécidomyies (pl. 33).

On peut distinguer deux sortes d'œufs de Cécidomyies : les uns
sont susceptibles de fécondation et produits par l’insecte parfait; les
autres ne sont pas susceptibles de fécondation et sont produits par des
larves. Comme nous avons parlé de ces derniers en traitant de la
pædogénèse, il ne sera question ici que des premiers.

L'œuf des Cécidomyides est entièrement occupé par le vitellus qui se
compose de minimes granulations mêlées à des gouttelettes adipeuses
plus grosses et tenues en suspension dans une matière liquide. Comme
les bords et les deux extrémités de l'œuf paraissent vides, on en peut
conclure que l’on se trouve en présence d’une double enveloppe, une
interne, entourant le vitellus, et une externe, détachée de l’interne
et, comme celle-ci, transparente, molle et peu résistante. Ils varient
suivant les espèces et peuvent différer par la forme, la couleur, le
nombre et les dimensions.

1° Forme. Si l'on compare entre eux les œufs des diverses espèces
de Cécidomyies, on est frappé de la grande diversité de ferme qu’on
leur trouve. Tous ont cependant cela de commun qu'ils sont tou-
jours plus longs que gros; il en est du moins ainsi pour toutes les es-
pèces connues jusqu'à ce jour. Il est vrai que M. Rübsaamen dit avoir
observé des œufs sphériques chez deux Cécidomyies qu'il a décrites
comme nouvelles, mais dont l’une, nommée Schizomyia propinqua, est
identique à Schizomyia nigripes Fr. Lw., et l’autre, appelée d’abord
Epidosis sociabilis n. Sp. &. L., puis publiée sous le nom de Schizomyia
sociabilis, n'estautre chose que Clinodiplosis Liebeli Kieff.; mais comme
j'ai examiné ces deux Diptères, j’ai pu me convaincre qu'ici encore
l’auteur allemand à fait erreur. Les principales formes que j'ai obser-
vées jusqu'ici sont l’ovoidale, Pellipsoïdale, la forme en fuseau, la eylin-
drique et la forme pédiculée.

La forme ovodale est la moins allongée que je connaisse. Elle est
peu fréquente. Je lai observée chez les espèces du genre Cystiphora,
dont les œufs sont une fois et demie aussi longs que gros, avec un
gros bout arrondi et une extrémité amincie. Nous trouvons encore
cette forme, mais un peu plus allongée, chez quelques autres espèces :

384 J.-J. Kierrer. (204)

cest ainsi que les œuis d'Oligotrophus Hartigi Licb., de Winnertzia
obscura KielT., de W. rubra Kieff. et de Lestodiplosis rosea Kielf. sont
de 2 à 3 fois aussi longs que gros.

La forme ellipsoidale est plus fréquente; la longueur égale alors de
deux à trois fois la largeur et les deux bouts sont également gros et
arrondis. Nous la remarquons entre autres dans le genre Stefaniella,
chez Otigotrophus capreae Winn. etmajor KiefT., Monarthropalpus buxi
Lab. Lestodiplosis septemguttata Kelf., Camptomyia binotata Kielr.,
Peromyia Leveillei Kielr., etc.

La forme en fuseau, c’est-à-dire amincie aux deux bouts, parait en-
core rare. Citons comme exemple les œufs de MWikiola fagi Hart. et
Oligotrophus juniperinus D. G. qui sont trois fois aussi longs que gros,
ceux de Perrisia lupulinae Kieff., Rhabdophaga clavifex Kielt. et Win-
nertzia piclipes Kiel. qui sont quatre fois aussi longs que gros, ceux
de Perrisia persicariae L. et praticola Kieff. qui sont environ cinq
fois aussi longs que gros. L'œuf d’Asphondylia prunicola Wachtl offre
la transition entre la forme pédieulée et celle en fuseau.

La forme cylindrique est la plus fréquente. Les œufs que nous com-
prenons dans cette catégorie ont la forme d’un cylindre dont les deux
bouts sont également arrondis. Citons comme exemples ceux de Maye-
tiola destructor Say, Clinodiplosis equestris Wagn., Cl. mosellana Géh.,
Joannisia sanguinea Kiel. et Brachyneura squamigera Winn. qui sont
trois à quatre fois aussi longs que gros; ceux de Rhabdophaga pulvini
Kielf., rosaria H, LWw., Perrisia tiliamvolvens Rbs., P. periclymenti Rbs.,
Contarinia rumicis H. LW. qui sont de quatre à cinq fois aussi longs
que gros; ceux de Pseudohormomyia granifer KielT., Rhabdophaga
medullaris Kiel. Rhopalomyia Kiefferi Trott. et Colomyia clavata
Kieff. qui sont de cinq à six fois aussi longs que gros; ceux de
Rabdophaga Pierrei KielT. et Xylodiplosis praecox Winn. dont les pre-
miers sont six à sept lois, et les seconds sept à huit fois aussi longs
que gros.

Fréquemment la forme cylindrique est combinée avec la forme ovoi-
dale ; on y remarque alors un gros bout arrondi etune extrémité amin-
cie. Tel est le cas pour les œufs d’'Asphondylia Hornigi Wachtl et de
Harmandia tremulae Winn. qui sont trois à quatre fois aussi longs que
gros, etpour ceux de Janeliella thymicola Kielf., Winnertzia nigripen-
nis Kielf., Frérenia tenella Kieff. et Leptosyna acutipennis Kielf., tous
quatre à cinq lois aussi longs que gros.

D'autres fois la forme cylindrique est combinée avec celle en fuseau ;
les deux bouts sont alors également amincis. Nous trouvons cette
forme chez Contarinia sorbi Kieff., Macrolabis Marteli Kieff., Perrisia

(205) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 389

galii H. Lw., piri Bouché et scabiosae Kieff., tous cinq à six fois aussi
longs que gros (pl. 33, fig. 21).

La forme pediculée, que j'ai signalée comme très rare en 1894, est au
contraire celle que l’on trouve chez la plupart des nombreuses espèces
qui composent le genre Contarinia (pl.33, fig. 10-11,43-1%) ; je l'ai observé
en outre dansle genre Stenodiplosis Reut. Dans ces cas l’œufest cylindri-
que, ordinairement quatre à cinq fois aussilong que gros,etse prolongeant
en un pédicule de longueur variable, quise termine en pointe. Tantôt ce
pédicule est très court, par exemple chez Contarinia pisi Winn., où il
n’atteint que le huitième de la longueur de l'œuf, C. picridis Kieff. où
il égale un sixième, et C. ballotae Kieff. où il mesure le cinquième;
tantôt il atteint le quart de cette longueur, par exemple chez Stenodi-
plosis geniculati Reut. et Contarinia lonicerearum Fr. Lw., ou le tiers,
comme chez C. aprilina Kieff. et C. scabiosae Kieff., ou la moitié, ce
qui est le cas pour C. aequalis Kieff., C. corylina Fr. Lw.,C. pulchripes
Kieff. et C. pulosellae Kieff., ou les deux tiers, comme chez C. Schlech-
tendaliana Rbs., ou enfin les quatre cinquièmes, comme chez C. dacty-
lidis H. Lw.et C. anthonoma Kieff.; tantôt il égale presque la longueur
de l’œui, ce qui est le cas pour C. avenae Kieff. ou la dépasse même, par
exemple chez C. arrhenatheri Kieff., viburni Kielf. et tritici Kirb. (1).

20 CouLeur. Les œufs des Cécidomyies offrent une coloration blan-
châtre, ou d'un rouge variant du rouge pâle au rouge sang. A peu
d’exceptions près, ils sont blanchâtres toutes les fois que l'abdomen du
Diptère offre une couleur blanchâtre, citrine ou vitelline, etils sontrouges
quand l'abdomen est lui-même de cette couleur. Nous avons vu plus
haut, en parlant des larves, que la coloration de celles-ci est indépen-
dante de celle de l'œuf, et que l’on peut voir une larve rouge éclore
d’un œuf blanchâtre et vice versà ; peut-être la coloration varie-t-elle,
dans ces cas, avec l’âge de l’œuf? C’est ainsi que l’œuf de Clinodiplosis
equestris Wagn. est, selon Wagner, blanc au début, puis rosé et enfin
d'un rouge sang.

3° NOMBRE ET DIMENSIONS. L’abdomen d’une Cécidomyie femelle ren-
ferme en moyenne de 80 à 100 œufs. J'ai trouvé, pour beaucoup d’es-
pèces, un chiffre bien supérieur, par exemple 126 chez Perrisia per-

(1) 11 est étonnant que parmi les nombreux auteurs qui ont traité jusqu'ici
de cette Cécidomyie du Blé, aucun n'ait signalé la forme pédiculée des œufs.
B. Wagner en indique même la forme, les dimensions et la couleur, mais n'a
pas remarqué le pédicule ; il est probable que cet auteur a observé et décrit
les œufs de Clinodiplosis mosellana Géh. (aurantiaca Wagn.) et qu'il les
a pris pour ceux de Contarinia trilici.

Ann. Soc. Ent. Fr., LXIX, 1900. 25

380 J.-J. KIEFFER. (206)

sicariae L. ; 445 chez Rhabdophaga Pierrei Kieff.; 180 chez Porricondyla
albimana Winn.: 190 chez Janetiella thymicola Kielf. ; 200 chez Rhab-
dophaga clavifeæ Kieff. et Oligotrophus Hartigi Lieb. ; 220 chez Perri-
sia pri B.; 280 chez Rhabdophaga rosaria H. Lw.; environ 300 chez
Winnertzia nigripennis, Kielf.; entre 300 et 400 chez Perrisia inclusa
Frauenf, Jen ai trouvé moins de soixante chez peu d'espèces, par
exemple chez Winnertzia rubra Kielf., W. obscura KielT. et Clino-
rhyncha tanaceti Kielf. qui en renfermaient de 50 à 60; et chez Cump-
tomyia binotata Kieff. qui n’en contenait qu’une vingtaine. Selon La-
boulbène, les œufs de Monarthropalpus buxi Lab. ne seraient qu’au
nombre de 10 à 12; j'ai observé le même insecte et j'ai toujours trouvé
60 à 80 œufs.

Les œufs des espèces à génération pædogénétique sont remarquables
par leur petit nombre, qui est seulement de quatre ou cinq, et par leurs
grandes dimensions qui atteignent presque la longueur de l'abdomen
du Diptère (pl. 33, fig. 8).

Quant aux œufs des autres espèces, on peut dire que leur longueur
atteint en moyenne un tiers de millimètre. Laboulbène indique 0,4 mill.
pour la longueur de l'œuf de la Cécidomyie du Buis, mais c’est sans
doute par erreur; d’après mes observations, ces œufs, de forme ellip-
soïdale, comme le dit bien Laboulbène, mesurent 0,24 sur 0,14. Les
plus petits que j'ai vus, appartiennent au genre Cystiphora; chez C. ta-
raxaci Kieff., ils mesurent 0,17 en longueur sur 0,09 en largeur au
gros bout; chez Perrisia filicina Kieff., 0,25 sur 0,05. Ceux de Stefa-
niella atriplicis Kieff. atteignent 0,26 sur 0,09; de Dasyneura rapha-
nistri Kiel. et de Perrisia rubicundula Rbs. 0,30 sur 0,06; de Conta-
rinia corylina Fr. Lw.et de C. picridis Kieff. 0,30 sur 0,05, sans le
pédicule ; de C. scabiosae Kieff. 0,30 sur 0,07; de C. acetosae Kielf. et
de Rhabdophaga pulvini Kieff. 0,32 sur 0,07; de Contarinia pulchripes
Kieff. 0,33 sur 0,08 ; de Rhabdophaga medullaris Kieff. 0,35 sur 0,06; de
Contarinia ballotae Kieff. 0,35 sur 0.07; de Perrisia lychnidis Heyd.
0,35 sur 0,09; de Rhabdophaga Pierrei Kieff. 0,40 sur 0,06; de Rhab-
dophaga rosaria H. Lw., Perrisia lupulinae Kieff. et P. piri Bouch.
0,40 sur 0,08; de Contarinia rumicis H. Lw. 0,40 sur 0,09; de ÆZar-
mandia cristata Kieff. 0,40 sur 0,15 ; de Perrisia capitigena Bremi 0,42
sur 0,12; de Contarinia avenae Kieff. 0,43 sur 0,08; de C. arrhena-
theri Kieff. 0,44 sur 0,08, tous deux à l'exclusion du pédicule; de Di-
cerura scirpicola KiefT. 0,50 sur 0,09. Les plus grands appartiennent au
genre Hormomyia ; ceux de 77. cornifex Kieff. mesurent 0,60 sur 0,20.
On voit par ce tableau que ce ne sont pas toujours les petites espèces
qui ont les plus petits œuls. La femelle de Rhabdophaga rosaria est

(207) Ceécidomyides d'Europe et d'Algérie. 387

plus de deux fois aussi grande que celle de Perrisia pri, et les œuis
de ces deux espèces ont pourtant les mêmes dimensions.

Remarque. Dans trois cas, à savoir pour un Wénnertzia, pour Xylo-
diplosis et pour Choristoneura, j'ai observé, outre les œufs de forme
très allongée, des corps ovoidaux, ayant environ un tiers de millimètre
en longueur, et offrant parfois une tache plus claire à leur gros bout.

$ 3. — DÉGATS ET REMÉDES.

Nous venons de voir, en décrivant les mœurs des Cécidomyies, que
la plupart des espèces vivent aux dépens des plantes. A cette particu-
larité de leurs mœurs se rattache une question d’entomologie appli-
quée, que nous abordons maintenant. Un certain nombre d'espèces de
Cécidomyies occasionnent des dégâts considérables à la culture; on a
essayé différentes méthodes pour arrêter leurs ravages; mais jusqu’à
présent, comme l'expérience l’a démontré, le meilleur remède à été
celui que fournit la nature, quand elle suscite un nombre suffisant de
parasites qui anéantissent la redoutable armée des moucherons dévas-
tateurs. Nous examinerons done d’abord les Cécidomyies nuisibles et
les moyens de les combattre, puis nous dirons quelques mots de leurs
ennemis naturels.

I. — Cécidomyies nuisibles et moyens de les combattre.

Il ne peut être question ici que des Cécidomyies phytophages, et en-
core faut-il en éliminer toutes celles dont la plante nourricière n'offre
aucune utilité à l’homme. Les espèces phytophages étant restreintes de
la sorte, on peut dire de la plupart d’entre elles qu’elles n’occasionnent
que des dégâts insignifiants.

Citons comme exemple Wikiola fagi Hart. Le poids de quinze galles
de cette espèce correspond, selon Büsgen [57] à celui de six feuilles;
trois galles absorbent par conséquent autant de substance qu’une
feuille. Or, certaines années, ces galles sont tellement nombreuses sur
le Hêtre, que le limbe des feuilles en est tout couvert; celles-ci parais-
sent alors courbées par en bas ou diversement contournées et ne peu-
vent sans doute plus être de grande utilité à l'arbre. J'ai constaté en
Lorraine une invasion semblable à celle qu’observa Altum, en 1871, en
Allemagne et dans le Tyrol, et qu’il décrivit ainsi : «Les feuilles étaient
tellement couvertes de ces galles, que les arbres jusqu’à une hauteur
de dix mètres, offraient un aspect étrange, et que leurs branches
pliaient sous le poids de plusieurs millions de galles. L'année suivante,
les galles étaient plus rares que d'ordinaire » [2, t. IE, p. 296].

388 J.-J. KIEFFER. (208)

Il y a cependant un nombre plus restreint d'espèces qui occasionnent
des dégâts considérables et parfois de véritables désastres, quand elles
apparaissent en grande quantité. Les unes s’attaquent aux produits
des jardins; les autres, aux arbres des forêts; les dernières enfin, de
beaucoup plus redoutables, nuisent à l’agriculture.

1° Cécidomyies nuisibles à l’horticulture.

’armi les espèces à rapporter ici, les unes s’attaquent aux fruits, ou
aux fleurs, c’est-à-dire aux poires, aux groseilles et aux fleurs des Ro-
siers cultivés ; les autres font périr les greffes, ou nuisent d’une autre
facon aux arbres fruitiers ou aux arbrisseaux des jardins.

Contarinia pirivora Riley.

Cet insecte vit, à l’état larvaire, à l'intérieur des jeunes poires dont
il occasionne la perte. « Vers le 12 du mois d'avril, écrit Schmidber-
ger [668], au moment où les pétales des fleurs du Poirier commencaient
à apparaitre entre les sépales du calice, j’observai la première Céci-
domyie occupée à y déposer ses œufs. Posée sur le milieu du bouton
à fleur, elle percçait (1) les pétales au moyen de son oviducte long et
crèle, et déposait ses œuis sur les étamines de la fleur encore fermée.
L'opération dura environ sept minutes et demie. Après qu'elle se fut
envolée, je coupai en deux le bourgeon qu'elle avait percé, et jy
trouvai les œufs entassés sur les anthères. IIS étaient blancs, allongés,
pointus à un bout, transparents et au nombre de 10 à 12. J’apercus en-
suite, du 12 ou 18 avril, d’autres femelles occupées à pondre; j’en vis
même une qui s'était posée sur le côté de la fleur, de sorte qu’elle eut
à percer non seulement la corolle, mais encore le calice (?). Une autre,
pour laquelle l'opération avait duré plus longtemps qu’à l'ordinaire,
demeura fixée à la fleur, ne pouvant plus en dégager son oviducte…
Le nombre des œufs déposés dans une fleur est variable : tantôt je n’en
trouvai que quelques-uns, d’autres fois plus de vingt. » Ce chiffre
peut encore être dépassé, car Géhin écrit [163] : « Dans certaines poires
on n’en compte que 15 à 20, tandis que dans d’autres, en 1858 surtout,
j'en ai trouvé jusqu'à 70 et même 80. » L’éclosion se fait rapidement,

(1) L'insecte introduit sans doute son oviducte grêle et flexible entre les pé-
tales, mais sans les blesser.

(2) Elle a peut-être déposé ses œufs sur le calice, ou profité d'une ouver-
ture qu'un autre insecte, parexemple un Rhynchophore, aura pratiquée à cet
endroit.

(209) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 389

surtout quand le temps est chaud. « Dès le quatrième jour qui suivit
la ponte, continue Schmidberger, je trouvai les jeunes larves fraiche-
ment écloses et en train d’émigrer vers l'ovaire, où on les trouve com-
plètement installées avant l'épanouissement de la fleur ; de cette facon,
elles évitent le contact des rayons du soleil qui leur sont très nuisibles.
Arrivées au centre de l'ovaire, elles commencent à en dévorer l’inté-
rieur (!). Quand elles ont mangé toute la pulpe de la poirette, elles ont
aussi atteint tout leur développement et n’attendent plus qu’une occa-
sion favorable pour déloger. Cette occasion se présente à la première
pluie ; les poirettes pourrissent alors, se fendillent et laissent sortir les
jeunes larves qui se courbent en arc et s’élancent au loin, pour se
rendre ensuite en terre. Je me suis convaineu que ces larvesne se fai-
saient aucun mal en sautant de la sorte. Une d'elles, qui avait sauté
à trois reprises d’une hauteur de 9 pieds sur le plancher d’une
chambre, pénétra en quelques secondes dans la terre sur laquelle je
la déposai.

€ S'il ne pleut pas, elles attendent que la poirette se détache, tombe à
terre, et y pourrisse par son contact avec le sol humide, de manière à
permettre ainsi aux jeunes larves d’en sortir, ou bien celles-ci se fraie-
ront un chemin à travers la paroi de leur prison, ce qui n’a lieu
qu’exceptionnellement. En règle générale, elles demeurent longtemps
renfermées dans la poirette couchée à terre, sans pouvoir en sortir. Je
ramassai un jour quelques poirettes qui, à l'extérieur, ne paraissaient
nullement déformées et je les déposai, les unes dans ma chambre, les
autres sur la terre d’un pot de fleurs; or, à la mi-juillet, en ouvrant ces
poires couvertes de moisissure, j'y trouvai à l’intérieur les larves en-
tassées et pleines de vie;-après avoir extrait ces dernières, je les mis
en contact avec de la terre humide et la plupart d’entre elles se hàtè-
rent de s'y enfoncer. » Schmidberger ne fut pas le seul à remarquer
que les larves attendent une pluie pour se rendre en terre. Géhin fait
la même remarque, et Riley la confirma. « Il semble, dit ce dernier,
que les larves quittent le fruit de préférence pendant une pluie d'orage
ou que peut-être la pluie en pénétrant à travers les fentes jusqu’à l’in-
térieur du fruit, les force à déloger. L’extrait suivant d’une lettre de
M. Col le prouve : Nos ouvriers s’occupaient un jour de la cueillette
des poires attaquées par la Cécidomyie, lorsqu'une violente pluie d’o-
rage les força d'interrompre leur ouvrage pendant une heure ou deux.

(1) Il est évident que les larves de Cécidomyies ne peuvent pas dévorer l’in-
térieur d’un fruit. Celles-ci, comme toutes les autres, se contentent de sucer
les parties liquides.

390 J.-J. KIEFFER. (210)

Retournant à leur occupation à la fin de l'orage, ils constatèrent qu’un
panier rempli au delà de la moitié de poirettes infestées, fourmillait de
larves qui sautillaient dans toutes les directions. Toutes avaient quitté
les fruits et cherchaient à sortir du panier. Les ouvriers examinèrent
ensuite les poires attaquées, encore fixées à l’arbre, et constatèrent
qu'elles étaient vides : toutes les larves en étaient sorties pendant la
pluie » (596, p. 284]. « Si le temps est sec, écrit Géhin, il arrive que
des poires qui contiennent des larves de Cécidomyies se dessèchent
complètement et que cette sécheresse, jointe à la contraction que su-
bissent les poirettes, font périr toutes les larves contenues dans ces
jeunes fruits. Cette dernière circonstance à surtout été très facile à ob-
server en 1858 dans certains jardins des environs de Metz, où, dès la
fin de mai, le Doyenné d'hiver avait la moitié de ses fruits desséchés
et où l’on trouvait dans l’intérieur durei et racorni les petites larves
mortes et desséchées (1). »

Il est à remarquer que ni Schmidberger ni Géhin ne parlent d’une
déformation du fruit; bien plus, le premier, comme nous venons de le
voir, dit expressément qu'il a trouvé des larves « dans des poirettes
qui, à l'extérieur, ne paraissaient nullement déformées ». Riley dit au
contraire : « Les fruits attaqués croissent et offrent bientôt une forme
un peu contournée, ou irrégulière et un peu bosselée, ou d’autres fois
arrondie d’une facon anormale. Si l’on ouvre une de ces jeunes poires,
le dedans parait creusé, les graines écartées et comme rongées et tout
l'intérieur désorganisé. Les larves d’un blanc jaunâtre, au nombre de
10 à 30, paraissent entourées de déjections en forme de granulations,
et sont fixées à la chair du fruit; en grandissant, elles absorbent la

(1) Je n'ai jamais trouvé de larves de Sciarines dans les envois qui m'ont
été faits. Il n’est pas étonnant que les Sciara qui déposent leurs œufs sur
toutes les matières végétales en décomposition les pondent aussi sur les poi-
rettes qui commencent à pourrir, mais on à tort de leur attribuer ensuite
des dégâts qu'ils n'occasionnent pas. Le Sciari piri Schmidb. et le Sciara
Schmidbergeri Koll. ne sont donc absolument pas à considérer comme nui-
sibles au Poirier. Quiconque s'occupe de l'élevage des Cécidomyies, sait qu'on
obtient souvent avec les Cécidomyies des éclosions de Sciara en plus ou moins
grand nombre. Quant à la larve que Schmidberger décrit comme étant celle
de Sciari piri et dont la tête « est pointue, avec deux taches noires sur le
devant », c'est évidemment celle de la Cécidomyie et non celle d'un Sciara ;
c'est ce que Géhin a déjà remarqué, quand il a écrit : « En rapprochant ce
qui précède de ce qui a été dit à propos de la larve de la Cécidomyie, on voit
que, sauf la taille qui est différente, on peut croire qu'il s'agit du même
insecte. »

(211) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 391

pulpe, mais d'ordinaire elles ne parviennent pas à absorber tout linté-
rieur du fruit » [l. c., p. 283-284]. On serait tenté de croire, d’après
cela, que l’espèce observée en Amérique, est différente de celle d'Eu-
rope. Il n’en est rien; car toutes les poirettes que j'ai reçues des lo-
calités indiquées par Géhin, ainsi que celles que M. Ferrand m'a en-
voyées du Luxembourg, avaient une forme bosselée et très irrégulière,
avec une grande £avité interne, et les larves qu’elles contenaient, con-
concordaient en tous points avec celles que Riley m'a envoyées. Le
seul point pour lequel Riley ait fait erreur, c’est quand il parle des dé-
jections granuleuses de la larve; pas plus ici que chez les autres larves
de Cécidomyies on ne voit trace de déjections.

Notons encore que les différentes sortes de poires ne sont pas égale-
ment attaquées. D’après une citation de Riley (p. 285), l’insecte aurait
sa poire favorite. « Je n’ai pas trouvé une seule larve, dit-il, dans les
poires d'Anjou et de Seckel, et seulement un petitnombre dansles va-.
riétés autres que celles de Lawrence. Quant aux 125 arbres apparte-
nant à cette dernière variété, ils avaient un sixième de leurs fruits in-
festé. »

C’est vers la mi-mai, par conséquent au bout de quatre à cinq se-
maines, que les larves, arrivées à leur maturité, cessent de prendre
de la nourriture et cherchent à gagner le sol. La profondeur à la-
quelle on les trouve en terre est en moyenne de 2 à 3 centimètres, selon
Riley ; de 8 à 10 centimètres, selon Géhin [163, p. 325, note]; elles y
demeurent un temps plus ou moins long, avant de se former un cocon.
Celui-ci est blanchâtre, mince, ovoidalet couvert de terre qui y adhère.
Le changement en nymphe se produit quinze jours avant l'apparition
de l’insecte partait. Cette espèce n’a qu'une génération par an.

Historique. — Schmidberger observa le premier, en Allemagne, vers
1830, la Cécidomyie des poirettes et crut y reconnaitre l'espèce décrite
par Meigen sous le nom de Cecidomyia nigra Meig. La description don-
née par Meigen ne permet nullement de reconnaitre l’insecte qu'il a
eu sous les yeux, De là vient que Macquart s’est également trompé,
en croyant voir Cecidomyia nigra Meig., une première fois, dans une
espèce qui vit surles chatons du Bouleau [429, p. 436], et, une seconde
fois, dans une autre qui vit sur le Charme [ibid., p. 448]. Plus tard, après
que Nürdlinger l'eut encore une fois signalée pour l'Allemagne, Géhin
l'observa pendant les années 1857 et 1860 en Lorraine, aux environs
de Metz, et trouva que, dans certains jardins, la moitié des jeunes poires
périssaient sous l'influence de linsecte.

En 1885, Smith, et l’année suivante Riley, la signalèrent aux États

392 J.-J. KIEFFER. (242)

Unis. D'après ce dernier, linsecte leur aurait été importé d'Europe.
Cela parait en effet fort probable, car d’une part linsecte est le même,
comme je m'en suis convaincu par les types de limago, que Riley m'a
envoyés; et, d'autre part, il paraissait d’abord confiné, en Amérique,
dans un verger situé près de Meriden; or le propriétaire de ce verger
avait fait venir de France, en 1874, un grand nombre de jeunes poi-
riers sur lesquels il fit greffer des variétés américaines; avant cette
époque, il n’y avait pas trace de la Cécidomyie des poires, mais une an-
née ou deux après cette date, il constata, pour la première fois, la pré-
sence du parasite.

Plus tard, Bloomfield l’a encore signalé à Hastings, en Angleterre,
et tout récemment M. Ferrand l’a découvert dans le grand-duché du
Luxembourg. Le nom de pirivora Ril. doit demeurer à cet insecte,
puisqu'il n’est nullement prouvé que Cecid. nigra Meig. lui soit iden-
tique.

Remède, — Le moyen le plus simple eten même temps le plus efficace
pour détruire la Cécidomyie des poirettes, consiste, selon Riley, à
cueillir, un peu avant la mi-mai, toutes les poires bosselées, et à les
brûler ou bien à en nourrir les pores, avant que les larves n'aient eu
le temps d’en sortir.

Clinodiplosis piricola Noôrdl.

Cette espèce a les mœurs du précédent, et c'est sans doute pour ce
motif que Riley, selon l'avis que Mik lui en avait donné, l’a considérée
comme probablement identique à pirivora Ril. Pour moi, l’insecte dé-
crit par Nôrdlinger sous le nom Cecidomyia piricola diffère de pirivora
Ril. et doit faire partie du genre Clinodiplosis Kieff. En effet : 4° la co-
loration est autre chez piricola, la partie postérieure de la poitrine et
l'abdomen étant d’un rouge vif; 2° la tarière ne parait pas être pro-
tractile, car Nôrdlinger n’en fait aucune mention, tandis que dans sa
description de Cecid. nigra Meig., il écrit : « tarière aussi longue que
le corps » ; 3° comme des poirettes recueillies aux environs de Metz,
renfermaient quelques larves rouges de Clinodiplosis mêlées aux larves
jaunâtres de Contarinia, je crois pouvoir rapporter ces larves rouges
à l'insecte décrit par Nôrdlinger. Géhin a probablement aussi observé
ces deux sortes de Cécidomyies et confondu l’une avec l’autre; il parle,
en effet, de « larves blanches, jaunes ou rougeûtres et de taille variable,
qui se trouvent dans les jeunes poires » [l. e., p. 325]. D'autre part, il
écrit : « Au sortir des jeunes poires, les jeunes larves n’ont qu'à se
laisser tomber sur le sol, ce qu’elles font sans se blesser »; ceci est vrai

_—

(243) Cécidomyides d'Europe et d’Algerie. 393

pour les larves du Clinodiplosis, mais non point pour celles de Conta-
rinia pirivora, qui sont douées de la faculté de sauter.

Perrisia piri Bouché.

Les larves blanches de P. piri orment un enroulement marginal sur
les feuilles du Poirier. Selon Macquart, « elles sont quelquefois très
nuisibles au Poirier en racoquillant l'extrémité des jeunes tiges et en
occasionnant la courbure du tronc ». H. Loew dit du même insecte :
« Si l’année est sèche, les pousses dont les feuilles sont déformées de
la sorte se dessèchent et périssent. » D'après mes observations, Cet
insecte est généralement inoffensif, à moins qu'il ne s'attaque aux
pousses des greffes, ce qui amène alors le dessèchement de celles-ci.

Une Cécidomyie encore inconnue s'attaque de la même facon à
l'Abricotier selon H. Loew [404, p. 376].

Perrisia mali Kielf.
Les larves rouges de cette espèce produisent sur le Pommier des dé-
gâts analogues à ceux que nous venons de voir pour le Poirier, c’est-

à-dire un enroulement marginal des feuilles et le dessèchement des
jeunes greffes, quand celles-ci ont été attaquées.

Oligotrophus Bergenstammi Wachtl.

Cet insecte, qui n’a encore été signalé qu’en Italie et à Corlou, dé-
jorme les bourgeons et les pousses du Poirier et de Prus salicifolia
Lois. Les bourgeons dans lesquels la femelle a déposé ses œuis se
changent en une production entièrement ligneuse, conique ou sphé-
rique, de la couleur de l'écorce, laissant reconnaître plus ou moins
distinetement, à sa surface, les vestiges des feuilles entre lesquelles se
trouvent les loges larvaires. Celles-ci sont ovalaires, tapissées d’un cocon
brun et brillant et enfoncées dans la couche lisneuse ; chacune d'elles
fait saillie au dehors. sous forme d’élévation hémisphérique, un peu
aplatie, d'un diamètre de 2 mill. et entourée d’un anneau de leutrage
gris: cette élévation hé misphérique, ombiliquée en son centre, forme
en quelque sorte le couvercle de la loge larvaire, et se trouve soulevée
et détachée par la nymphe au moment de l'éclosion. Quand plusieurs
bourgeons voisins se trouvent déformés de la sorte, il en résulte un
renflement et un raccourcissement de l’espace internodal.

Asphondylia pruniperda Rond.

Observée seulement en Italie, cette espèce, comme son nom lin-

39% J.-J. KIEFFER. (214)

dique, fait avorter les fruits du Prunier domestique (Prunus domestica) .
Elle dépose ses œufs dans une fleur qui se change en galle. On ne la
plus retrouvée depuis Rondani.

Contarinia ribis Kiel.

Les larves blanches et sauteuses de C. ribis vivent dans les fleurs
du Groseillier épineux. Les fleurs attaquées grossissent, demeurent
fermées, et se dessèchent après la sortie des larves, sans donner de
fruit. Les larves se rendent en terre vers la fin d'avril ou au commen-
cement de mai, et en sortent comme insectes ailés, en mars de l’année
suivante.

Pour empêcher leur multiplication, il faut cueillir et détruire, avant
la sortie des larves, toutes les fleurs gonflées.

Lasioptera rubi Heeg.

Les renflements variqueux, de forme irrégulière, que l’on voit sur
les tiges et les rameaux du Framboisier sont dus à L. rubi. Comme
la métamorphose a lieu dans les galles, il suffit de couper celles-ci en
automne ou en hiver, c’est-à-dire avant la sortie des insectes, et de les
jeter au feu.

Clinodiplosis oculiperda Rbs.

Cet insecte est nuisible aux greffes. La première mention qui en a
été faite, est due à E. von Moor [520, p. 105-107]. Cet observateur
avail remarqué, en juillet et août, sur des greffes à écusson pratiquées
sur des Pêchers, des Abricotiers et des Poiriers, de petites larves
rouges logées entre les points de jonction des deux cambiums et ar-
rôlant la croissance de la greffe. Un peu plus tard, mais encore dans
le courant de la même année 1881, une communication anonyme
(520, p. 175}, signala ces mêmes « vers rouges » sur les greffes de Ro-
siers et l’on fit savoir qu'ils provenaient d'œufs déposés par une Cé-
cidomyie dans les fentes de la greffe.

Le docteur Karsch les signala de nouveau en 1889 dans les termes
suivants : (M. C. Schaufuss m’envoya en décembre 1887, de Dresde. des
larves d’un Diptère encore inconnu qui, selon lui, sont très nuisibles
à la culture du Rosier. Elles rongent (!) l'insertion de l'œil dormant et
détruisent totalement la greffe. Dans le courant des mois de septembre

(1) Cette expression est inexacte, puisque les parties buccales des larves de
Cécidomyies ne leur permettent pas de ronger.

(215) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 395

et d'octobre 1887 elles ont ruiné toute une pépinière de Rosiers. Jai
réussi à les détruire en partie avec de la ouate imprégnée de naphta-
line. — La larve apode, péripneustique, a neuf paires de stigmates,
deux lobes anaux pointus dépourvus de soies, une peau transparente
couverte d’écailles chitineuses et une taille de 4 mill. Il ne peut être
question que d’une Cécidomyie, mais je ne connais aucune espèce de
eelte famille ayant de semblables mœurs, de sorte que nous nous trou-
vons ici probablement en présence d’un nouvel ennemi de la culture
des Rosiers. Déjà l’an dernier, des dégâts semblables m'ont été signa-
lés d’une autre localité » [254 bis].

Clinodiplosis (?) rosivora Coquill.

Aux États-Unis, on a signalé de divers côtés la larve de cette Céci-
domyie comme très nuisible aux Rosiers des serres. Elle vit au nom-
bre de 4 à 6 dans les bourgeons à feuilles et les boutons à fleurs, qui
jaunissent et se dessèchent. Les Rosiers étaient infestés à un degré tel
que, dans plusieurs serres, certaines variétés m’avaient pu développer
une seule fleur dans le courant de l’année. On a remarqué que l’in-
secte ne s’attaquait qu'à des variétés déterminées, à savoir, aux Ro-
siers nommés Weteore, Wooton, La France, Duchess of Albany; aucune
autre variété n’a élé attaquée, bien que croissant parfois à côté d’une de
ces quatre variétés dont tous les bourgeons étaient desséchés. Comme
on n’a jamais trouvé ces larves en plein air, on en conclut qu’elles pro-
viennent probablement des contrées tropicales. On en a fait mention
pour la première fois en 1886, dans une lettre qui ne fut publiée qu’un
peu plus tard (Insect Life, 1889, p. 284, et 1891, p. 294).

Neocerata rhodophaga Coquill.

Les mœurs de cet insecte sont absolument identiques à celles de l’es-
pèce précédente. Les larves ont été observées par Dorsett sur les Ro-
siers appelés Météore et La France, dans des serres près de Washington
[97 bis].

Clinodiplosis rosiperda Rbs.

Cette espèce, observée jusqu'ici en Westphalie par Rübsaamen, en
Saxe par Thomas et en Lorraine par moi, s'attaque également aux
fleurs des Rosiers cultivés, comme les deux précédentes, mais en pleine
terre. Sa présence se reconnait aisément aux roses entr'ouvertes qui
se dessèchent sans s'ouvrir davantage. Les larves, de couleur rouge,
vivent à la base des pétales et se métamorphosent en terre ou dans
la fleur,

396 J.-J. KIEFFER. (216)
20 Cécidomyies nuisibles à la silviculture.

Les espèces que nous mentionnerons ici nuisent aux arbres rési-
neux et aux saussaies.

Perrisia abietiperda Hensch.

Les pousses terminales de Picea excelsior, habitées par les larves
de cette Cécidomyie, paraissent en avril privées presque entièrement de
leurs aiguilles, renflées par endroits, contournées, avec des bourgeons
terminaux ordinairement atrophiés. Les loges larvaires, contenant
alors une larve ou une nymphe, se voient le long de ces pousses dé-
formées, partant du coussinet d’une aiguille et se dirigeant oblique-
ment par en bas, traversant les couches corticale et ligneuse et attei-
gnant sur de faibles pousses jusqu’à la couche médullaire. En même
temps la base de ces pousses porte de nombreux trous de sortie, ce
qui indique que l’insecte a deux générations par an, dont ja première,
éclose en avril ou en mai, forme des galles à la base de la pousse, et
la seconde, apparaissant en juin ou en juillet, en forme vers le haut de la
pousse. Cet insecte a été découvert en 1880 par Czech, en Autriche,
et M. Martel l'a découvert plus tard en France.

Perrisia piceae Hensch.

La femelle de cette espèce dépose ses œufs dans les bourgeons des
Épicéas. Quand ceux-ci commencent à s'ouvrir, les jeunes larves frai-
chement écloses se rendent à la base des aiguilles inférieures et s’y
fixent au côté qui touche l'axe de la nouvelle pousse. Par suite de
leur succion, la base de l'aiguille s’élargit et forme une galle vésicu-
laire, dont les bords se rejoignent par-dessus la larve qu’ils emprison-
nent complètement. On ne trouve au plus que sept galles à la base
d’une pousse, et leur présence y détermine un renflement considérable.
L'insecte arrive à sa maturité en automne et se métamorphose dans
un cocon blanc, en avril; l'insecte ailé apparait dans le courant du
même mois. Mik soupconne que P. piceae n’est que la forme hivernale
de P. abietiperda.

Perrisia laricis F. Lw.

Cette espèce, comme son nom l'indique, vit aux dépens du Mélèze,
auquel elle est parfois très funeste. Au printemps, quand les bourgeons
du Mélèze commencent à s'ouvrir, la femelle dépose un œuf à la base
du faisceau d’aiguilles entr’ouvert. Immédiatement après son éclosion,

(217) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 397

la jeune larve se fixe au sommet du bourgeon qui se forme au centre
de ce faisceau. Comme cet arbre ne produit de bourgeons au prin-
temps qu’à l'extrémité de ses courtes pousses latérales, tandis que ses
pousses terminales n’en formeront qu’à la fin de leur croissance en
longueur, c’est-à-dire en automne, il s'ensuit qu’on ne trouvera jamais
la larve que dans le bourgeon d’une pousse latérale. Au commence-
ment d'août la larve n’a encore atteint que la moitié de sa croissance.
Arrivée à maturité, à la fin de l'automne, elle se forme un mince cocon,
dans lequel elle se changera en nymphe, en mars ou en avril de
l’année suivante. Au moment de l’éclosion, selon von Tubeuf, le bour-
geon s'ouvre en calice pour laisser passage à la nymphe.

Les bourgeons habités par une larve subissent la déformation sui-
vante. Ils s’agrandissent et atteignent parfois un diamètre de 5 mill.,
grâce à une modification de leurs parties internes. Les minimes rudi-
ments d’aiguilles, entourés par les écailles brunes du bourgeon, s’hy-
pertrophient à leur base, s'élargissent et s'appliquent étroitement l’un
à l’autre, donnant ainsi au bourgeon l'aspect d’une masse verte, com-
pacte et charnue. Au milieu de cette galle, par conséquent au sommet
du cône de végétation, se voit une excavation arrondie qui renferme
la larve. Tous les bourgeons attaqués paraissent revêtus à leur extré-
mité d’une mince couche de résine transparente, ce qui les distingue
encore facilement des bourgeons normaux. En hiver, selon Fr. Low,
ou ordinairement déjà en été, selon von Tubeuf, cette couche de résine
subit une transformation : elle devient opaque , blanche et cassante.

Henschel [221], Fr. Lôw [415] et Nitsche n’ont observé ces déforma-
tions que sur des bourgeons à aiguilles ; ce dernier indique encore que
les bourgeons attaqués réussissent parfois à continuer leur croissance
et qu'ils prennent alors une forme cylindrique et allongée. Plus ré-
cemment, en 1897, le professeur von Tubeuf a publié sur ce sujet des
observations nouvelles, qui complètent celles qui avaient été faites
avant lui [754]. Henschel et Fr. Lôw avaient observé les dégâts en
Styrie, Nitsche à Tharand, en Prusse, et R. Hartig à Méran, dans
le Tyrol, où les Mélèzes offraient un aspect étrange , parce que des
branches en très grand nombre étaient entièrement mortes. De son
côté, von Tubeuf les observa près de Munich également en telle abon-
dance que des branches entières paraissaient desséchées et que d’autres
contenaient la larve dans toutes leurs pousses latérales. Il remarqua
que non seulement les bourgeons à aiguilles, mais encore les bourgeons
à fleurs.hébergeaient la larve. Sur certains rameaux à fleurs mâles
tous les bourgeons paraissaient attaqués ; leur forme toutefois n’était
pas hémisphérique, comme celle des galles provenant de bourgeons à

398 J.-J. KiEFFER. (218)

aiguilles, mais en ovale allongé et avec des dimensions beaucoup plus
grandes. « On ne trouve ordinairement les galles, dit cet auteur, que
sur les pousses de la seconde année, celles de la première année n'ayant
pas encore de pousse latérale et la mouche ne pondant que sur l'extré-
mité d’une pousse latérale qui vient de former son faisceau d’aiguilles.
La pousse de l’année produit dans le courant de l'été, à l’aisselle des
aiguilles, des bourgeons qui, au printemps de la seconde année, se dé-
velopperont en des pousses latérales : ce sont principalement celles-ci
que les Diptères choisissent pour y effectuer leur ponte ; mais comme,
dans l'intervalle, le bourgeon situé à l'extrémité de la pousse terminale
s’est développé lui-même en une pousse terminale, les galles se trou-
veront donc sur la pousse de l’année précédente.

« En règle générale la pousse attaquée ne se développe plus davan-
tage, Mais il arrive parlois, pour cette pousse latérale, un fait analogue
à celui qui se produit sur une pousse quelconque, quand on éloigne le
bourgeon terminal. On sait, en effet, que si on enlève le bourgeon ter-
minal, il en résulte pour les bourgeons latéraux une affluence de sève,
grâce à laquelle les bourgeons les plus rapprochés de l'extrémité pro-
duiront une pousse allongée comme une pousse terminale. La même
chose se produit ici : le bourgeon terminal et unique de la pousse
latérale étant anéanti par la larve, il se forme à l’aisselle des aiguilles,
et parlois en grand nombre, des bourgeons axillaires, auparavant déjà
plus ou moins préparés, et visibles maintenant tout à l’entour de la ca-
vité qu'occupait précédemment la larve et qu'ils finissent par envahir
complètement. Ces petits bourgeons axillaires, qui se forment ainsi au
printemps après la sortie de la larve, produisent des aiguilles normales,
quand ils ne sont qu'au nombre de 4 ou 2, ou bien élargies, épaissies
et courtes, quand ils se présentent en grand nombre. Dans le premier
cas, ils forment des pousses axillaires normales qui peuvent de nouveau
ètre attaquées au printemps suivant et se changer en galles. Parfois ils
s’allongent considérablement; on peut voir alors une pousse latérale
portant sur ses côtés plusieurs pousses axillaires, et ces dernières, atta-
quées par la Cécidomyie, peuvent elles-mêmes produire plus tard des
pousses axillaires. En outre, ces pousses axillaires, formées sur des
pousses latérales, sont susceptibles de produire des fleurs mâles et fe-
melles. »

Cryptodiplosis brachyntera Schw.

On remarque bien des fois à l'automne que les rameaux des jeunes
Pins, moins souvent de grands arbres, ont la plupart de leurs ai-
suilles jaunes, courtes et plus grosses que les normales. Si l’on en-

(249) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 399

tr’ouvre la gaine de ces aiguilles, on y trouvera une larve rouge, qui
se rend en terre ou sous les mousses au commencement de lhiver.
Quand les rameaux sont fortement infestés, il n’est pas rare qu'ils se
dessèchent et périssent.

Rhabdophaga saliciperda Du.

Les larves de cet insecte vivent dans les grosses branches et dans le
tronc des Saules à feuilles étroites. La première mention qui en ait été
faite, est due à Dufour, qui a observé ces déformations, en 1840, dans le
Sud-Ouestde la France : « Les larves, dit-il, étaient logées dans un espace
dénudé et malade d’un tronc de Saule vivant. » H. Loew les signala
pour l'Allemagne en 1851, et leur donna le nom de Cecid. terebrans n.
sp. Dix ans plus tard Giraud les mentionna pour l'Autriche : « Jai ob-
servé plusieurs fois, écrit ce dernier, sur les rives du Danube, près de
Vienne, sur les Saules, et entre autres sur Salir purpurea, des espaces
du tronc ou des grosses branches habités, en prodigieuse quantité, par
cette espèce. À l’époque de l’éclosion de cette Tipulaire, le bois était
comme lardé de ces robes de nymphes blanches, à moitié engagées
dans l'écorce et exactement conformées comme l'indique M. Dufour.
L'écorce des parties attaquées paraissait quelquefois dans des condi-
tions normales; mais dans d’autres parties, la couche superficielle se
détachait. Dans un cas, je remarquai un espace qui paraissait avoir
été antérieurement ravagé et ensuite abandonné par l’insecte, mais,
tout autour de cette place, se trouvaient de nombreuses dépouilles
de nymphes; la dévastation allait progressivement en s'étendant. Un
tronçon de saule conservé dans le Musée impérial de Vienne, est aussi
à peu près dans les mêmes conditions » [182, p. 479-480]. D'après les
exemplaires que M. l’abbé Pierre m’a envoyés de Moulins, on constate
un renflement fusiforme très apparent, plus ou moins allongé, attei-
gnant en moyenne de 1 à 2 décimètres en longueur; rarement ce ren-
flement est unilatéral, en forme de bosselette et n’atteignant que quel-
ques centimètres en longueur. Après la sortie de l'insecte, l'écorce
criblée de trous se dessèche, puis se soulève et finit ordinairement
par se détacher complètement et tomber, de sorte que les loges lar-
vaires apparaissent au dehors. Celles-ci, de forme ellipsoïdale, longues
de 4,5 à 2 mill., sont situées dans la couche ligneuse immédiatement
en-dessous de l'écorce, et comme chacune d'elles correspond à un des
trous dont cette dernière est criblée, elles sont donc tellement rappro-
chées, qu’elles ne seront souvent séparées l’une de l’autre que par une
cloison, ce qui donne à la surface du bois l'apparence d’un réseau.

400 J.-J. KiEFFERr. (220)

Comme Franck l'a remarqué, le bois dont se compose ces cloisons
est brunätre, et composé de fibres contournées qui offrent une autre di-
rection que les fibres normales, aussi Ratzeburg (Waldverderbniss, I,
p. 320) les considérait-il avec raison comme des excroissances qui se
sont élevées autour et au-dessus des larves. Une coupe transversale
du bois donne, selon Franck, le résultat suivant : à la couche ligneuse
de l'année précédente succède une portion annulaire très mince offrant
encore la constitution normale; c’est la portion de couche qui s’est
formée au printemps avant l’action des larves; après cette portion
normale il s’en est formé une autre beaucoup plus épaisse, dans
laquelle sont situées les loges larvaires ; celle-ci à subi une hypertro-
phie et se compose de cellules parenchymateuses lignifiées, relative-
ment grandes, de forme irrégulière et contenant une masse brunâtre.

Rhabdophaga Giraudiana Kiel.

Cette espèce, très voisine de la précédente avec laquelle elle a été
confondue, n’est connue que d'Autriche et de Lorraine. Giraud, qui l’a
découverte, la décrit ainsi : « J'ai recueilli au mois de mars. plusieurs
tiges de Populus alba vivantes, mais paraissant en souffrance et dé-
formées par un gonflement fusiforme de plusieurs pouces de longueur.
Ces tumeurs ont produit, du 4° au 10 avril suivant, une quantité con-
sidérable de petites mouches qui ne se distinguent en rien de celles du
Saule. Les dépouilles de leurs nymphes ont la conformation caracté-
ristiques des premières et toute la surface de l'écorce en est comme
entrelardée. Dans ce cas, comme dans le précédent, la couche ligneuse
sous-corticale se trouve altérée et comme cariée, mais ici l’écoree est
encore solidement adhérente partout » [l. c.. p. 4801].

Rhabdophaga Pierrei Kieff.

Cette espèce encore vit à l’état larvaire dans le bois des grosses
branches et du tronc, mais elle n’a été trouvée jusqu'ici qu’en Lor-
raine, sur les Saules à feuilles larges et velues (Salix aurita, cinerea et
caprea). La déformation n'offre jamais l'aspect d’un renflement fusifor-
me, comme chez les deux précédentes, mais seulement des bosselures
irrégulières et peu visibles; parfois même sa présence n’est trahie à
l'extérieur que par les trous de sortie de l’insecte. Les loges larvaires
sont moins rapprochées et autrement disposées que chez R. saliciperda,
leur grand axe n'étant pas parallèle à l'axe de la branche, comme chez
cette dernière, mais perpendiculaire à lui; les larves sont donc enfon -
cées plus profondément dans la couche ligneuse. L'écorce, criblée de

(221) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 401

trous, se dessèche au bout de là 2° ou de la 3° année, mais je n'ai pas
remarqué qu’elle se fendille ou se détache. La branche ou le tronc se
dessèchent un peu plus tard.

Rhabdophaga clavifex Kief.

L'extrémité des pousses terminales des Saules est parfois renflée en
massue, couverte de feuilles agglomérées et d’une pilosité anormale.
Cette agelomération de feuilles est due à un raccourcissement des es-
paces internodaux. De nombreux bourgeons se trouvent donc rappro-
chés l’un de l’autre; chacun d’eux est déformé et contient une larve
qui se métamorphose au même endroit. Cette déformation, visible sur-
tout en hiver, produit la dessiccation de la pousse; c’est pour ce motif
qu’Altum a donné à l’insecte qui l’occasionne, mais qu’il n’a pas décrit,
le nom de Cecidomyia apiciperda.

Rabdophaga medullaris Kiefï.

La couche médullaire des pousses de divers Saules est souvent
habitée par la tarve de R. medullaris; la partie de la pousse qui est
située au-dessus de la loge larvaire se dessèche.

Rabdophaga salicis D.G., dubia Kieff. et Karschi Kieff.

Ces trois espèces forment des renflements ovoïdaux, fusiformes ou
sphériques sur les rameaux des Saules, rarement encore sur un
pétiole ou une nervure. Nous donnerons plus loin, en décrivant ces
insectes, une description détaillée de leurs galles, ce qui est aussi le
cas pour les espèces qui suivent.

Rhabdophaga rosaria H. Lw. et rosariella Kieff.

Ces deux espèces produisent sur les Saules une déformation des |
pousses terminales ou axillaires, connue sous le nom de rose du Saule.

Rhabdophaga pulvini Kieff.. superna Kieff.
et gemmicola Kieff.

Ces espèces vivent dans les bourgeons des Saules, et en occasion-
nent la perte. La première est située en dessous du bourgeon dessé-
ché sous le coussinet de la feuille; la seconde et la troisième sont lo-
gées dans le bourgeon même.

Ann. Soc. Ent. Fr., LxIX, 1900. 26

402 J.-J. KiEFFER. (222)

3 Cécidomyies nuisibles à l’agriculture.

On peut classer ces espèces dans trois catégories différentes : les
unes nuisent aux légumes, les autres au fourrage, les dernières aux
céréales.

Contarinia pisi Winn.

Les larves sauteuses de cette espèce vivent dans les gousses des
Pois et y font avorter les fruits. On les trouve aussi bien dans les Pois
cultivés dans les champs que dans les diverses variétés cultivées dans
les jardins.

Dasyneura brassicae Winn.

On trouve les larves de cette Cécidomyie, ordinairement en grand
nombre, dans les siliques du Colza, où elles font avorter les graines.
On les a signalées dans divers pays comme très nuisibles à la récolte
du Colza.

Contarinia nasturtii Kieff. ct Perrisia raphanistri Kieff.

Toutes deux vivent dans les fleurs d’un grand nombre de Cruci-
fères, telles que les Choux, les Navets, les Radis, le Colza, etc., elles
y provoquent un renflement et empêchent la formation du fruit.

Contarinia onobrychidis Kieff. et medicaginis Kieff.

Ces deux espèces sont nuisibles au fourrage. La première vit à l’état
larvaire dans les fleurs du Sainfoin, et la seconde dans celles de la
Luzerne. J'ai observé en Lorraine des champs de Sainfoin aussi bien
que de Luzerne, dont les fleurs étaient en majeure partie attaquées,
paraissant gonflées et demeurant fermées ; la récolte de la semence était
par suite complètement manquée.

Perrisia flosculorum Kieff.
Celle-ci déforme d’une facon analogue les fleurs du Trèfle (Trifolium
pratense) et y empêche de même la formation des graines.
Lasioptera devastatrix Skuse.

Selon Skuse, cette Cécidomyie est extrèmement funeste aux récoltes
de foin en Australie. Les Graminées attaquées jaunissent et se dessè-
chent., On a constaté que des localités, auparavant indemnes, ont été
env ahies par le fléau après qu’on y avait importé du foin infesté.

(223) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 403

Cecidomyia sorghicola Coquill.

Le D' Coquillet cite cette espèce, propre au Nord de l'Amérique,
comme nuisible au Sorghum, plante fourragère dont la culture est
une source de revenus très importante pour certaines parties des États-
Unis. La larve vit et se métamorphose dans le fruit, entre l'écorce et
la graine, et occasionne la perte de cette dernière.

Contarinia tritici Kirb.

Cette espèce, ainsi que les suivantes, s'attaque aux Céréales. On
trouve ses larves dans les épillets du Blé et du Seigle.

Plante nourricière. — Après l’accouplement des insectes ailés, les
femelles quittent l'endroit de leur éclosion pour se rendre dans un
champ de Blé ou de Seigle, afin d'y déposer leurs œufs. Il est à re-
marquer que cette ponte a lieu sur des épis qui commencent à sortir
de la feuille qui leur servait de gaine avant la floraison. Une fois que
le Blé entre en fleur et que les étamines paraissent, les Cécidomyies
cessent d'y pondre, car le grain serait trop avancé lorsque les œufs
donneraient naissance aux larves. Si dans un champ de Blé quelques
épis sur les bords sont en retard pour la floraison, on treuvera encore
sur eux les Cécidomyies occupées de la ponte. Selon B. Wagner, les
premiers Diptères qui éclosent, alors que le Blé n’est pas encore entré
en épi, confient leurs œufs au Seigle qui est plus précoce; un peu
plus tard, le Seigle, étant entré en fleur, ne pourra plus leur conve-
nir; les insectes qui suivront seront donc obligés de se rendre sur le
Blé, dont l’épi commence «lors à apparaître. Plus tard, après la florai-
son du Blé, les retardataires parmi les Cécidomyies n'auraient plus
d'autre ressource que de confier leurs œufs au Chiendent (Triticum
repens). Comme on ne cultive que le Seigle aux environs de Bitche,
je n’ai pas pu constater si les indications de B. Wagner sont exactes.
Je ferai remarquer seulement que la larve qui habite le Seigle a les
papilles dorsales dépourvues de soie, tandis que celles des épillets du
Blé aurait, selon M. P. Marchal [446, p. 66, fig. 2 et p. 68], ces papilles
prolongées en une courte soie : « Chez mosellana, écrit-il, d’après les
dessins de Wagner, les soies latérales et dorsales paraissent être nota-
blement plus longues que chez tritici. »

Mais il est possible que le D' Marchal ait fait son observation sur
une larve différente de C. tritici; en tout cas, le segment anal qu'il
représente à la figure 2 n’est pas celui d’un Contarinia.

Certains auteurs ont indiqué que €. tritici vit aussi sur l’Avoine et
sur l’Orge. Il est probable qu’alors il y à eu confusion, Je trouve en

AI J.-J. KiEFFER. (224)

abondance des larves de Cécidomyies non point dans l’Avoine cultivée,
mais dans l'Avoine pubescente (Avena pubescens) et dans l'Avoine
Grande-Herbe (Arrhenatherum elatius); or ces larves appartiennent à
deux espèces différentes entre elles et différentes de C. trilici, à savoir
Contarinia avenae Kieff. et arrhenatheri KiefT. B. Wagner écrit de
même qu'il ne peut ajouter foi aux assertions des auteurs, d’après
lesquelles les larves de C. fritici Vivraient aussi dans les épillets de
l’Avoine et de l'Orge. Il s'appuie surtout sur l'observation suivante. On
avait ensemencé avec de l’Avoine et de l’Orge des champs qui avaient
porté, l’année précédente, du Blé infesté par la Cécidomyie. En juin,
à l’éclosion des Diptères, Wagner constata dans ces champs d’Avoine
et d'Orge des nuées de Cécidomyies fraichement écloses, mais il ne
put découvrir plus tard une seule larve dans les épillets de ces cé-
réales.

Temps de la ponte. — En Angleterre, en France, en Prusse et en Lor-
raine, c'est au mois de juin qu'a lieu la ponte de cette espèce. Elle
commence une ou deux heures avant la nuit, selon que le temps est
plus ou moins serein. Si le temps est couvert ou pluvieux, quelques-
unes se hasarderont en plein jour à vaquer à l'occupation de la ponte.
Kirby écrivait déja à ce sujet : « Depuis le 3 juin 1798 jusqu'à la fin
du même mois, on pouvait voir chaque soir, sur les épis du Blé, les
femelles du Diptère; avant sept heures on n’en apercevait ordinaire-
ment que peu, mais vers huit heures elles se montraient en extrême
abondance et s’occupaient à déposer leurs œufs; enfin vers neul
heures elles disparaissaient de nouveau. Leur nombre était tel, que si
chacune d'elles avait déposé ses œuîis dans un épillet différent, plus
de la moitié des grains aurait été perdue. J'ai observé sur un même
épi douze femelles pondant simultanément. Et parmi ces myriades de
femelles, pas un mâle! Le matin tout à disparu; mais si l’on secoue
les tiges de Blé, on s’apercevra aisément que les insectes n’ont pas
quitté l'emplacement, car ils apparaissent alors en grand nombre, en
s’élevant de la base des tiges sur laquelle ils se tiennent cachés pen-
dant le jour. » Asa Fitch et Bazin disent au contraire que la ponte dure
toute la nuit. Tel est aussi l’avis de B. Wagner. « J'ai remarqué, écrit
ce dernier, que le nombre des pondeuses ne diminuait jamais à l’ap-
proche de la nuit et j'ai encore observé celles-ci à plusieurs reprises,
à quatre heures du matin. Mais ce qui acheva de me convaincre, ce
fut une visite nocturne faite à un champ de Blé. Le 44 juin, à une
heure du matin, je me rendis dans une localité où j'avais remarqué, la
veille au soir, une multitude de Cécidomyies. Le ciel était couvert; cà

(225) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 405

et là un éclair sillonnait les nues. Arrivé au but de ma promenade,
j'allumai ma petite lanterne et je vis à ma stupéfaction, presque sur
chaque épi, au moins une demi-douzaine de Cécidomyies occupées
à pondre. Jamais je ne les avais vues en pareil nombre le soir, La
lumière de la bougie parut les effaroucher, car elles mirent fin à leur
occupation et voltigerent autour de moi, comme pour m’exprimer leur
mécontentement d'avoir été dérangées pendant leur œuvre des té-
nèbres. »

Éclosion et larves. — Les œufs sont déposés en paquet sur la face in-
terne d’une glumelle. Au bout de huit ou de neuf jours ils donnent
naissance à des larves qui sont d’abord blanches, puis d’un jaune vi-
tellin. A peine écloses, celles-ci commencent leur migration vers l’o-
vaire. Selon Bazin, « le commencement de juillet est l’époque du plus
grand concours de larves, la fin du même mois, l’époque de leur dis-
parition. Pendant leur séjour, leur présence est accusée ordinairement
à l'intérieur par une couleur livide que prend la glume à l'endroit où
elles résident, c’est-à-dire vers sa base. On comprend que par un sé-
jour assez prolongé et continu, cette place soit flétrie. » On trouve
d'ordinaire de à à 10, rarement jusqu’à 20 ou même 40 de ces larves
sur un ovaire. Elles s’y nourrissent des sucs qui sont attirés dans
l'ovaire pour former le grain, et non point du pollen, comme le
croyait Kirby. Si elles sont nombreuses, elles absorbent tous les
sues, et le grain fait complètement défaut; si elles sont au contraire
en petit nombre, elles partagent avec le grain l'aliment qui devait
revenir à celui-ci seul; dans ce cas, le grain sera amaigri, contourné ou
tronqué, et formera ce que l’on appelle le petit ble.

Quand elles ont atteint leur entier développement (!), les larves
quittent l’épi, et,se courbant en arc, elles s’élancent dans l’espace pour
aller subir leur métamorphose en terre, dans une profondeur de 2 à
10 centimètres, selon Wagner. La manœuvre du saut projette toujours
la larve en avant à une distance de 6 à 20 centimètres et à une hauteur
de 2 à 4 centimètres. Selon Wagner, les larves ne sortiraient qu'après

(1) À en croire B. Wagner, la larve, après sa sortie de l’épi, subirail encore
deux mues importantes. Après la première, qui aurait parfois aussi lieu
dans l'épi, la peau larvaire ne serait plus lisse, mais parsemée d’aspérités
pointues et très petites, à l'exception de la tête et du segment anal; après la
seconde, elle serait couverte de verrues en forme d’écailles, se couvrant par
leurs bords. L'auteur à sans doute confondu ici la larve de Contarinia tritici
avec celle de l'espèce suivante, car je n'ai jamais pu découvrir d’autres aspé-
rités sur les larves de C. /rifici sorties de l’épi que celles des verrues spini-
formes.

406 J.-J. Kierrer. (226)

une pluie et ne quitteraient pas les épis qu’on place sur de la terre
humide, sans les humecter eux-mêmes ; Omerod et P. Marchal font la
même remarque. J'ai au contraire toujours observé que les larves
quittent les épis que l’on à coupés, dès qu’elles sont arrivées à leur
maturité; celles qui y demeurent sont parasitées.

La plupart des auteurs se sont trompés de même en indiquant que
quelques larves se métamorphosaient dans les épillets qui les ont nour-
ries, qu’elles étaient ainsi transportées avec les gerbes dans les gran-
ges, où elles échappaient au danger du battage et pouvaient devenir
insectes parfaits l'année suivante. Comme nous l'avons vu plus haut,
ces larves sont toutes parasitées.

Historique. — La plus ancienne mention de cette Cécidomyie remon te
à l’année 1771 et se trouve consignée dans les « Philosophical Tran-
sactions » de Londres. Un peu plus tard, en 1797 et en 1800, deux
autres Anglais, Marsham et Kirby, appelèrent de nouveau l'attention
sur les ravages occasionnés par la Cécidomyie dans leur pays. Environ
trente années plus tard, Gorrie évalue, pour quelques comtés d'Écosse.
les dégâts occasionnés par le Diptère, à la somme de 20.000 livres ster-
ling en 1827, de 30.000 en 1828 et de 36.000 en 1829 (Encyel. of Agric.
London, p. 820). Bell écrit de Perthshire à la même date : « Encore
une année ou deux comme celle-ci, et le Diptère qui ravage nos Blés
aura mené à la banqueroute les deux tiers de nos fermiers » (London’s
Magaz. of Nat. Hist., vol. Il, p. 292). Vers la même époque, selon
Buel (Judge Buels Report, in The Cultivator, vol. VI, p. 26), ou dès
1820, selon Jewett (New England Farmer, vol. XIX, p. 301), on enre-
gistrait aux États-Unis des dégâts considérables occasionnés par le
même moucheron. Le fléau y rayonna de l’ouest de Vermont dans dif-
férentes directions ; en 1832, il gagna les environs de New-York et y
sévit avec tant de rigueur, que la plupart des fermiers renoncèrent
pour quelques années à la culture du Blé. En évaluant ces pertes à
prix d'argent, on a trouvé pour l'État du Maine seul qu'il perdit cette
année pour plus de à millions de francs.

En France, le redoutable insecte fut observé pour la première fois en
1846 par le docteur Herpin, de Metz [226], puis signalé en 1856 par Bazin
dans sa « Notice sur un insecte qui a causé les plus grands ravages
dans nos dernières récoltes de Blé sur pied ». Hagen et B. Wagner en
lirent mention pour l'Allemagne en 1860 et en 1866.

Remède.— Asa Fitch etB. Wagner indiquent comme remède préventil
de semer le Seigle plus tôt et le Blé plus tard, de sorte que le Seigle
puisse fleurir avant juin et le Blé entrer en épi en juillet, Wagner re-

(227) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 407

marque à ce sujet : « J’ai constaté une année que presque la moitié des
épis de Blé offraient un aspect étrange ; toute la moitié ou tout le tiers
supérieur de ces épis était vide, tandis que la partie inférieure était
remplie de grains. Je ne puis expliquer cela qu’en admettant qu’au
moment où les épis du Blé commencaient à apparaitre, les Cécidomyies
se trouvaient à la fin de leur essaimage; si ce Blé avait donc été semé
quelques jours plus tard, il aurait été complètement épargné, mais si on
l'avait au contraire semé quelques jours plus tôt, les épis auraient été
entièrement attaqués. » Jai fait une observation analogue, à plusieurs
reprises, aux environs de Bitche, mais l'aspect des glumes indiquait que
la gelée était cause du dégât; comme la moitié inférieure de l’épi était
encore recouverte par la dernière feuille au moment de la gelée, elle
fut épargnée et put produire plus tard des fleurs et des grains, tandis
que la partic supérieure, qui eut à subir les atteintes du froid, demeura
vide.

Géhin indique une autre méthode préventive, qui consisterait à faire
choix de variétés de Blé barbues, et à glumes tomenteuses. Il remarqua
que sur 308 épis, dont 259 étaient atteints par Clinodiplosis mosellana
Géh., donc 85 0/0, il n’y en avait que deux appartenant à une variété
barbue qui fussent atteints par la Cécidomyie, tandis que 13 en étaient
exempts.

Le meilleur moyen préventif me semble être l’alternance des cul-
tures, comme elle à lieu dans beaucoup de communes en Lorraine,
où le ban est divisé en trois parties, dont l’une est ensemencée en Blé
ou en Seigle, l’autre en Orge ou en Avoine et la troisième en Trèfle,
ou en Pommes de terre ou demeure en Îfriche. Les Cécidomyies sor-
tant de terre, dans des champs portant de l’Orge ou de l’Avoine, à une
très grande distance des champs de Blé, perdront leur temps à chercher
des tiges de Blé et périront pour la plupart avant d'être arrivées à ces
dernières.

Quant aux moyens de destruction, Bazin conseille la chasse au filet
pratiquée le soir au moment de l’essaimage. Cette méthode semble au
premier abord peu pratique ; pourtant l’auteur à déclaré dans une lettre
à Géhin, avoir obtenu par là des résultats étonnants. B. Wagner pré-
conise cette méthode comme étant la seule efficace et va jusqu’à de-
mander que l’on fasse une loi obligeant chaque propriétaire à capturer
avec un filet les Cécidomyies qui s’abattront sur son Blé!

Bazin propose encore le brülis des éteules et le labour profond après
la moisson. Je doute que le brülis des éteules puisse incommoder les
larves enfouies en terre. Quant au labour profond, il n’empêchera pas
les larves, avant la métamorphose, ni la nymphe, au moment de l’é-

108 J.-J. KIEFFER. (228)

closion, de remonter vers la surface du sol. J'ai observé des larves déjà
entourées de leur cocon, au fond d’un grand bocal, appliquées à la
paroi du verre. Le bocal fut ensuite rempli de terre. Plus tard, au
moment de l’éclosion, les nymphes se hissèrent à travers une couche
de terre d'environ un décimètre et demi de hauteur, et parvinrent
jusqu’à la surface, où l’éclosion eut lieu. B. Wagner écrit également :
« Les myriades de Cécidomyies que j'ai vues voltiger au-dessus des
champs labourés qui avaient porté, l’année précédente, du Blé ou du
du Seigle infesté, ne permettent pas de considérer le labour profond
comme un moyen de destruction. »

B. Wagner recommande encore la destruction des résidus du bat-
tage, qui doivent renfermer un grand nombre de pupes. Cette mé-
thode manque son but, puisque ces pupes produiront non point des
Cécidomyies, mais des parasites.

Clinodiplosis mosellana Géh. (aurantiaca Wagn.)

On trouve les larves de C. mosellana, avec celles de C. tritici, dans
les épillets du Blé et du Seigle. Comme le genre de vie de ces deux
espèces est le même, on comprendra qu’on ait pu confondre l’une avec
l’autre, ou encore, comme l’a fait Bazin, considérer la seconde comme
le mâle de la première. Un entomologiste de Metz, Géhin, a su reconnaître
l'espèce nouvelle, et l’a décrite en 1857. Un peu plus tard, B. Wagner
la signala pour les environs de Francfort et la décrivit sous un nou-
veau nom (!).

Le dégât occasionné par cette espèce dans le département de la Mo-
selle, en 1856, fut évalué par Géhin à deux millions de francs au mi-
nimum, c’est-à-dire à un chiffre représentant l'alimentation de la ville
de Metz pendant deux années. Géhin ajoute que si les autres parties
du département avaient été infestées au même degré que les environs
de Metz, la perte se serait élevée à sept millions. Quant à C. tritici,
il dit expressément que, pendant cette année, il ne l’a pas observée en
Lorraine.

Remèdes. — Le genre de vie étant le même que celui de Contarinia
t'ilici, les moyens préventifs et de destruction seront donc les mêmes
que pour cette espèce.

(1) Selon Wagner, la larve de cette espèce, quand elle quitte l'épi, serait
lisse comme celle de C. tritici; après une mue subséquente, elle serait par-
semée d’aspérités pointues et munie de papilles avec soie, que Wagner appelle
des spinules. Cette observation est erronée et démontre que Wagner a con-
fondu les larves des deux espèces.

(229) Cecrdomyides d'Europe et d'Algérie. 409

Mayetiola destructor Say.

Cet insecte, connu encore sous le nom de Mouche de Hesse (Hessian
Fly des Anglais et des Américains), vit, à l’état larvaire, caché sous la
gaine d’une feuille, fixé à la base de la tige du Blé, du Seigle, et, à
en croire B. Wagner, encore de l’Orge, et y produit un faible ren-
flement. Des espèces voisines de celles-ci, mais en différant spéciti-
quement, ont été observées sur l’Avoine cultivée et sur les Graminées
sauvages; divers auteurs les ont confondues avec la Mouche de Hesse
et en ont conclu que C. destructor pourrait vivre aussi sur les herbes
sauvages. Les expériences avec résultat négatif que Forbes a essayées
sur Phleum pratense, Agrostis vulgaris, Poa pratensis, Dactylis glome-
rata et Selaria (sans pieds de Blé témoins) et surtout celles du docteur
P. Marchal sur Bromus pratensis, Bromus mollis, Dactylis glomerata,
Festuca pratensis, Alopecurus pratensis et Holcus lanatus (avec pieds
de Blé qui se trouvaient au nombre de un ou de deux dans la même
caisse et qui furent contaminés) prouvent que la Mouche de Hesse ne
peut pas se développer sur ces différentes sortes d’herbes sauvages.

Selon les observations de Marchal, il peut y avoir jusqu'à quatre,
cinq et même six générations par an. La dernière génération pond ses
œufs sur les feuilles des jeunes pieds de Seigle ou de Blé. Comme ces
plantes n’ont pas encore de tige articulée au moment de l'invasion, et
que la gaine des feuilles sort du collet de la racine, on y trouvera donc
les larves sous ces gaines, au collet de la racine. D’après les observations
de B. Wagner, les jeunes pieds d’Orge, provenant de grains qui sont
tombés à terre pendant la moisson et qui ont germé dès le mois d’août,
hébergent les larves en plus grande quantité que les jeunes pieds de
Seigle provenant de grains semés à la mi-septembre. A défaut de jeunes
tiges, les œufs seront déposés sur les rejets qui se forment à la base des
éteules. Les jeunes plantes atteintes paraissent bientôt jaunâtres et finis-
sent par se dessécher complètement. A la fin de décembre, quand elles
entrent en décomposition, les larves qu’elles abritent ont cessé de
prendre de la nourriture et se trouvent désormais dans une pupe
qui les protège, et en contact avec le sol qui leur procure l’humidité
nécessaire à leur conservation.

La première génération du printemps trouve des plantes déjà plus
robustes, et ayant une tige articulée. Elle ne déposera plus ses œufs
sur les feuilles radicales, et les jeunes larves ne seront donc plus
tixées au collet de la racine, mais sous Ja gaine. au-dessus du premier
ou du second nœud. Les plantes attaquées ne se dessécheront pas,
mais comme l’endroit occupé par les larves devient plus faible par

#10 J.-J. KIEFFER. (230)

la succion de ces dernières, il s'ensuit que la tige n’est plus assez
forte pour porter un épi et qu’elle se brisera plus tard à l'endroit in-
lesté.

* Historique. — Ce fut en 1778 ou en 1779, lors des désastres occasionnés

aux récoltes de Blé dans les diverses parties des États-Unis, que la
Mouche de Hesse fit parler d'elle pour la première fois. On lui donna
ce nom, parce qu’on la considérait comme importée en Amérique avec
de Ja paille, par les troupes hessoises, pendant la guerre de sécession.
ille fit en effet sa première apparition à l'endroit où les troupes de
Hesse avaient abordé. B. Wagner a essayé de prouver que cette déno-
mination n’était pas justifiée. D’après lui, les troupes hessoisses qui sont
parties d’abord sous les ordres du général Heister, ont quitté Cassel en
mars 1776 et ont abordé à Long-Island le 12 août. La paille qu’elles
avaient emportée devait donc provenir de la récolte de 1775, et, par
suite, les Cécidomyies auraient dû éclore toutes en avril et en mai,
c’est-à-dire pendant le trajet, et non après le débarquement. Il serait
donc prouvé par là que les Hessois n’ont pas pu importer cette peste
en Amérique (1). Comme P. Marchal le remarque avec raison, cette
conclusion, reproduite depuis par Hagen [192], ne s’impose nullement,
car, sous l'influence de la sécheresse, l’éclosion des Cécidomyies peut
ètre retardée pendant des mois et même pendant des années.

Depuis son apparition en Amérique, le fléau n'a pas cessé de ra-
rager les Céréales. On y constata souvent une perte de 20 à 25 et par-
lois même de 75 pour cent de la récolte. En 1846, dans la section
Ouest de l'État de New-York, on évalua la perte à 500.000 boisseaux ;
en A885, le dégât pour tout l'État de New-York fut évalué à 400.000
dollars.

En Europe on n’a constaté, pour la première fois, la présence et les
ravages de la Mouche de Hesse, qu’en 183%. Dana (?) la trouva sur les
Blés de l'ile de Minorque ; il rapporte que cet insecte, au dire des Maho-

(1) A en croire l’auteur allemand, il serait bien plus probable que l'impor-
tation du redoutable insecte serait à attribuer aux Francais. Les raisons qu'il
fait valoir dans son chapitre : « Essai d'une nouvelle théorie sur l'importation
de Cecid. destructor en Amérique » sont les suivantes : 1° l'existence de cet
insecte en France depuis une date très reculée ; 2° les rapports de la France
avec l'Amérique du Nord, où elle avait des colonies très étendues; 3% la dis-
tance relativement courte qui la sépare du Nouveau-Monde et qui permettait
d'y importer de la paille contaminée, avant l’éclosion de la Cécidomyie.

(2) Herrick publia les observations de Dana dans Sillimanns Journal,
t. XII, p. 154.

(231) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. AA

nais, existait chez eux de temps immémorial et qu'il occasionnait de
grands dégâts dans leur île ainsi qu’en Espagne. Dans le courant de la
même année, Dana la découvrit encore en Italie, près de Naples, et en
France (!), près de Toulon. H. Loew la signala en 1859 pour l'Allemagne,
sous le nom de Cecid. secalina, n. sp. Un peu plus tard on constata sa
présence en Autriche, en Hongrie, et, en 1880, au sud de la Russie.

En 1886, on commenca à la remarquer en Angleterre et en Écosse, et
dans le courant de la même année, le nombre des insectes était de-
venu si considérable que, de tous côtés, ils attiraient l'attention des fer-
miers. Partout ils semblaient apparaitre pour la première fois et par-
tout aussi on signalait la rapidité avec laquelle ils se propageaient et
l'intensité des dégâts qu'ils causaient. Comme on y trouva des pupes
mêlées au grain, après le vannage du Blé, Ormerod en conclut que
l'insecte a pu leur arriver avec du blé importé.

Pour l’Asie Mineure, elle fut indiquée dès 4850 par H. Loew. B. Wa-
gner considère même comme probable que l'Asie, et en particulier les
pays que traverse l’'Euphrate, étant considérés comme patrie de nos
Céréales, seraient aussi le pays d’origine de la Mouche de Hesse.

Remèdes. — On a indiqué les méthodes suivantes : 1° Supprimer les
semis spontanées et les rejets, en brülant les éteules. De cette façon on
détruit beaucoup de larves ou de nymphes, et on supprime aux insectes
qui écloront pendant cette période leur plante nourricière. On réser-
vera donc l’'ensemencement en Trèfle pour les champs préalablement
occupés par de l’Avoine; ou bien s'il s’agit d’une attaque de la
Cécidomyie de l'Avoine, dont nous allons parler plus loin, on n’en-
semencera en Trèfle que des champs occupés par des Céréales autres
que l’Avoine. Quant aux brülis des éteules, il ne devra avoir lieu que
si le nombre des Cécidomyies non encore éeloses est considérable, et le
nombre des parasites très faible : il faut donc avoir recours à un en-
tomologiste expert, qui devra se rendre sur les lieux contaminés.

2 Ensemencement tardif. Les Blés semés tardivement lèvent à une
époque où il y a beaucoup de chances pour qu'il y ait peu ou point de
Cécidomyies adultes, les derniers essaimages étant passés.

3° Alternances des cultures. Nous en avons parlé plus haut, en trai-
tant de Contarinia triticr.

(1) Récemment le fléau sévit en Vendée avec une intensité telle que l’on
évalua à environ la moitié de la récolte le déficit pour l’année 1894. « Un hec-
tare qui aurait donné 22 hectolitres en temps ordinaire n’en a donné que 12
après l'attaque de la Cécidomyie. Beaucoup de champs ont été complètement
anéantis » (Marchal, /. c., p. 9).

412 J.-J. KiEFFER. (232)

4° Destruction des résidus du battage ou du vannage. Nous avons vu
que, si le Blé est infesté par C. tritiei, la destruction des résidus du
battage est inutile et même nuisible. Il n’en est plus de même pour
le cas où les Céréales seraient attaquées par la Moache de Hesse ou par
celle de l'Avoine, parce qu'alors les pupes ne renferment pas nécessai-
rement des parasites.

5° Faire choix de semence de varieté à paille dure et résistante (voir
P. Marchal, {. c., p. 60), et augmenter la force du Blé par l'emploi
des engrais.

6° Faire päturer le jeune Blé par les Moutons, soit à l'automne,
aussitôt que l’on remarque les œufs des Cécidomyies sur Je Blé nou-
vellement levé, soit au printemps. Si la terre est fertile, le Blé après
avoir été pàturé, repoussera sans en souffrir.

7° Faucher le Blé lorsqu'il est encore vert et que l'épiage n'est pas
commencé. Selon Asa Fitch, cette opération ne nuit pas à la récolte,
mais la retarde seulement, à condition que le sol soit fertile.

8° On indique encore l'emploi du rouleau que l’on ferait passer sur
les Blés au moment de la ponte des Cécidomyies, et celui des insecti-
cides tels que la chaux éteinte que l’on répandrait sur les champs atta-
qués; la pluie entrainant la chaux sous les gaines des feuilles, y fe-
rait périr les larves. Ces deux méthodes ne paraissent pas offrir une
chance de succès.

Mayetiola avenae March.

Cette espèce est à l’Avoine (Avena sativa) ce que la précédente est
au Blé et au Seigle. Voici en quels termes le docteur P. Marchal, qui
l'a signalée d’abord, décrit les rapports de cet insecte avec la plante
nourricière : « Les pupes sont logées au niveau du 1°", du 2° ou plus
rarement du 3° ou du 4° nœud. Au niveau des nœuds supérieurs elles
sont généralement isolées ou peu nombreuses et logées dans une pe-
tite fossette ovale déterminée dans la tige par la succion de la larve.
La tige peut alors devenir mince et cassante à ce niveau; mais, si elle
est suffisamment vigoureuse, elle continue sa croissance et le dommage
causé est sans importance. Pour les nœuds inférieurs, et notamment à
fleur de terre, le nombre des pupes peut être considérable : on en ren-
contre fréquemment de 18 à 20, toutes de grosse taille. La jeune plante
attaquée est renflée à sa base en forme de bulbe et se termine à son
extrémité supérieure par une pointe formée par les feuilles qui se
sont desséchées avant de s'épanouir ; elle se dessèche alors le plus sou-

(233) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 413

vent, après avoir à peine atteint quelques centimètres de hauteur.
Ces bulbes peuvent être considérés comme caractéristiques de lat-
taque de la Cécidomyie de l’Avoine » [l. c., p. 48].

Quant aux dégâts causés par cet insecte, nous trouvons chez le
même observateur les renseignements suivants : « Les Avoines d'hiver
ont été seules attaquées d’une facon capable d'attirer l'attention, parmi
toutes les céréales, dans le Poitou. Elles ont été attaquées par plaques
et ces plaques se sont peu à peu élargies. A Rambaud, PAvoine
semée en octobre 1893 a été à peu près détruite par la Cécidomyie ;
mais elle est repartie du pied, donnant des rejets qui ont été à leur
tour attaquées par les générations printanières; ce sont les larves qui
se trouvaient sur l’Avoine en juin qui ont attiré l’attention. Il est à
noter que pendant cette attaque, les Blés, les Seigles et les Orges sont
restés entièrement indemnes dans le Poitou. La récolte des Blés à
donné 33 hectolitres à l’hectare ; la récolte des Avoines d’hiver au con-
traire, qui s’annonçait très bonne et qui promettait 40 hectolitres à
l'hectare, est tombée à 19 hectolitres, soit une moitié » [L. c., p. 47].

Remèdes. — Ce sont les mêmes qui ont été indiqués plus haut pour
l'espèce précédente.

Phytophaga cerealis Rond. (frumentaria Rond.)

On ne peut dire avec certitude ce qu'il faut entendre par cet in-
secte. Rondani l’a décrit en 1843 sous le nom de Phytophaga cerealis ;
il ajouta qu'après l'avoir comparé avec des exemplaires de Cecidomyia
destructor, il y avait reconnu une espèce nouvelle. Plus tard, en 1864,
il changea le nom de P. cerealis en celui de Cecidomyia frumentaria
Rond., sans en indiquer le motif. Comme il éerit encore que « la larve
vit en société sur le Blé, au-dessus d’un des premiers nœuds, entre la
gaine et la tige et qu'elle se métamorphose au même endroit », on
serait autorisé à considérer néanmoins cet insecte comme identique
à Mayetiola destructor, si Rondani ne donnait pas expressément Comme
caractère générique de Phytophaga : « palpes composés de trois arti-
cles », ce qui exclut le genre Mayetiola, et comme autre caractère
« antennes d'environ 20 articles », ce qui ne convient pas non plus à
M. destructor.

Cecidomyia culmicola Morris.

Nous considérons également cette espèce comme synonyme douteux
de M. destructor. Selon Miss Morris, qui a observé cet insecte en Pen-
sylvanie, la Cécidomyie déposerait ses œufs en juin sur le grain. Ceux-

AU J.-J. KiEFFEr. (234)

ci n'écloraient que quand le grain vients à germer. La jeune larve
monterait dans la tige qui commence à pousser et y demeurerait jus-
qu'à sa maturité; elle en sortirait alors au niveau de la racine pour se
lixer ensuite à la paroi externe du chaume, et s’y transformer dans un
puparium analogue à celui de la Mouche de Hesse. Selon Harris, les
exemplaires adultes qui lui furent envoyés ressemblaient un peu à €:
trilici, mais étaient encore plus petits; leur mauvais état de conserva-
tion ne permit pas d'en donner une description.

Clinodiplosis equestris Wagn.

Cet insecte n'a encore été observé jusqu'ici qu'aux environs de
Fulda par B. Wagner. Comme les précédents, il vit à l’état larvaire sur
la tige d’une céréale, c'est-à-dire du Blé, mais il y produit une défor-
mation gràäce à laquelle il s’en distingue aisément. Selon B. Wagner
que nous allons suivre ici, on peut remarquer à la fin du mois de
juillet et au commencement daoût, soit un peu avant et pendant la
moisson, que la gaine de la feuille supérieure des tiges de Blé se
montre fréquemment gonflée d’une facon extraordinaire. Si l’on écarte
cette gaine, on remarquera au-dessus du dernier nœud, à des hauteurs
différentes, des larves rouges occupant chacune un enfoncement en
forme de selle. Cette déformation consiste en un renflement de cou-
leur verte, faisant saillie sur un côté du chaume, de forme allongée,
fortement proéminent en forme de bourrelet aux deux extrémités, et
sillonné dans le sens de sa longueur par un faible enfoncement ou ca-
vité larvaire, qui est limité à chaque bout par le bourrelet transversal
que nous venons de mentionner et qui lui donne l'apparence d’une
selle. Les cellules dont se compose cette déformation sont agrandies,
de forme irrégulière et traversent tout le parenchyme du chaume jus-
qu'au creux, La larve occupe toute la partie enfoncée de sorte que la
distance qui sépare les deux bourrelets correspond exactement à la
longueur de la larve. Toutes ces cécidies sont parallèles à l'axe de la
tige, et paraissent alignées l’une à la suite de l’autre, ordinairement
sans se toucher. Rarement deux ou trois d’entre elles se touchent par
un de leurs bourrelets : les deux bourrelets qui se touchent se fu-
sionnent alors en un seul ou peuvent aussi disparaître entièrement, de
sorte que l’on aura une cécidie unique, terminée à chaque extrémité
par un bourrelet, comme la forme normale, mais deux ou trois fois
aussi grande que d'ordinaire, et renfermant deux ou trois larves ali-
gnées. On les trouve presque exclusivement à la partie du chaume en-
veloppée par la gaine supérieure et à quelque distance au-dessus du

(235) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. #15

nœud. Il arrive rarement qu'on les voit encore échelonnées le long de
l'entre-nœud qui précède, ou même uniquement sur ce dernier. La
même tige porte d'ordinaire 3 à 10 larves, parfois aussi jusque 40 et
au-delà. Les galles se dessèchent avec les tiges, et les larves attendent
la pluie pour quitter leur plante nourricière et se rendre en terre, où
elles hivernent. L’éclosion des insectes parfaits a lieu en mai eten juin.
La femelle dépose ses œufs sur le dessus de la feuille supérieure, de
sorte que les larves doivent faire une migration après leur sortie de
l'œuf. Les chaumes attaqués par cette espèce, loin de dépérir, de-
meurent au contraire plus longtemps verts et paraissent plus vigou-
reux que les autres, mais l’insecte n’en est pas moins nuisible à la ré-
colle, car tous les chaumes voisins et non attaqués sont privés de la
sève qui aîfflue dans le pied attaqué, de sorte qu'ils donnent un rende-
ment de paille et de grain très inférieur. Wagner fait remarquer qu'un
fait analogue a été constaté pour C. tritici aux États-Unis où les fer-
miers avaient cru d’abord que ce redoutable ennemi des céréales pou-
vait être considéré comme bienfaisant, parce que dans les épis atta-
qués les grains demeurés intacts atteignaient un développement plus
fort.
Clinodiplosis marginata Ros.

Cette espèce, observée par Nowicki aux environs de Cracovie [547],
forme sur l’Orge des galles analogues à celles de C. equestris sur le
Blé. D’après une communication faite par B. Wagner dans une lettre
adressée à Nowicki, elle est distincte de la précédente et devrait être
rapportée, d’après l'examen de l’imago, à Diplosis marginata Roser.

On a observé sur Holcus et Calamagrostis des galles semblables,
mais qui sont dues à des Mayetiola.

Diplosis flava Meig.

Tout ce nous savons des mœurs de cet insecte, c’est que Roser pré-
tend l'avoir observé dans les chaumes des céréales.

Lasioptera cerealis Lind. (!).

Lindeman a signalé cette espèce pour la première fois en 1880, puis
une seconde fois en 1881. Selon lui, on l'aurait observée en Russie de-

(1) Cecidomyia cerealis A. F., qu'Asa Fitch considère à tort comme nuisi-
ble au Blé, parce qu'il l’a capturé dans les champs de Blé en société de C. /ri-
tici, aux États-Unis, est à considérer comme parasite des Cécidomyies. 11
fait partie du genre Lestodiplosis, ce qui est encore le cas pour Cecidomyi«
ornala Say. et caliplera A. F.

416 J.-J. KiErrERr. (236)

puis 4847 et elle y aurait causé plusieurs fois des dégâts considérables
dans les champs de Seigle où elle s’est multipliée, anéantissant le quart
et même le tiers de la récolte. Elle serait à considérer, dit-il encore,
comme importée d'Amérique, ce que confirmerait encore la grande
localisation de cet insecte observé seulement dans les gouvernements
de Mohilew et d'Orel. Cette dernière assertion est basée sur une er-
reur, car cet insecte parait assez répandu. Je l'ai découvert, il y a quel-
ques années, sur Trilicum repens, en Lorraine, et j'en ai communiqué
les larves, ainsi qu'un exemplaire de la plante attaquée, au docteur
von Schlechtendal, qui les à envoyés à M. Rübsaamen. Plus tard
Rübsaamen l’a trouvé aussi en Allemagne sur Calamagrostis lanceolata.
C'est par erreur encore que Lindeman dit de la larve qu’elle n’a qu'une
courte soie sur le côté de chaque segment; chaque segment porte sur
le dessus six soies dorsales et de chaque côté deux soies latérales.

Les chaumes des Graminées attaqués par cet insecte offrent au-dessus
du premier, rarement du second nœud, une grande tache noire, irré-
vulière, recouverte par la gaine foliaire. Cette tache est formée par une
membrane noire ettrès mince, qui s'applique à la surface du chaume,
Elle recouvre une fossette allongée, située dans le chaume, tapissée
elle-même par une membrane noire et brillante et renfermant une ou
plusieurs larves d’un rouge brique. Les tiges ainsi attaquées finissent
souvent par se briser au niveau des loges larvaires, comme cela a lieu
pour les chaumes infestés par Mayetiola destructor.

Epidosis cerealis Saut.

Cette espèce a été observée pour la première fois par Sauter, en 1813,
dans le grand-duché de Bade et en Wurtemberg. Elle causa de grands
dégâts sur l’Orge et le Triticum spelta pendant les années 1813 à
1816 ; quelque temps après, le même auteur constata sa présence sur
l'Avoine et sur le Seigle. La larve, d’un rouge brique, et longue de
3 millimètres, porte à son extrémité postérieure un appendice quadri-
lobé. La métamorphose a lieu en terre, et l’insecte ailé apparait en mai
ou en juin. La femelle pond ses œufs en petites masses sur les parties
supérieures de la tige; les larves vivent en sociétés nombreuses sous
les gaines foliaires, et, d'après le dessin, même au côté interne de la
feuille ; les tiges attaquées se dessèchent et périssent.

Plus tard, en 1869, Cohn trouva sur le Blé, en Silésie, un insecte qui
fut rapporté à la même espèce. Voici comment P. Marchal résume les
observations de Cohn, d’après H. Loew : « Les chaumes qui étaient
attaqués par les larves présentaient les deux entre-nœuds inférieurs

(237) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 417

indemnes; mais les entre-nœuds supérieurs, ainsi que lépi arrêté
dans son développement, étaient d’un brun noir et racornis, moi-
sis à leur intérieur, et entièrement renfermés dans des gaines foliaires
jaunes ou brunes ; entre le chaume mortifié et la gaine foliaire la plus
interne, généralement juste contre Le dernier nœud, se trouvaient les
larves d’un rouge vermillon et d’une longueur de 1 à 2,5 mill. L’extré-
mité antérieure de la larve, atténuée en pointe, présentait deux taches
oculaires noires et au-dessous de la pointe il y avait deux palpes courts;
l'extrémité postérieure au contraire était arrondie et terminée par deux
appendices fortement développés, chitineux, lamelliformes et présen-
tant deux dentelures inégales; cette structure rappelait assez celle qui
caractérise les larves des galles du Tremble (Populus tremula). HN était
à noter que, à côté des larves rouge cinabre ayant atteint toute leur
croissance, se trouvaient simultanément des larves toutes petites, en-
core très pâles, présentant la même structure que les précédentes et
trouvées dans des circonstances qui pouvaient donner à penser qu'elles
étaient peut-être engendrées par pædogenèse. Une larve ayant toute
sa croissance et trouvée le 29 juin, s'était au 15 juillet transformée en
une pupe de couleur chair, un peu plus fusiforme que n’était la larve.
Au bout de 48 heures survenait déjà l’éclosion de la Mouche, qui ap-
partient au genre Epidosis. Celle-ci est la première espèce de ce genre
dont la larve ait été observée sur une plante vivante. » La nymphose
se fait dans le chaume.

La réunion de larves mûres avec des larves très jeunes me fait soup-
conner que la Cécidomyie n’était pas l’auteur de la déformation, et
qu'elle vivait des parties antérieurement décomposées de la plante.

Il. — Ennemis naturels des Cécidomyies.

1° Oiseaux. Certaines galles de Cécidomyies sont recherchées par les
oiseaux. C’est ainsi que celles de Wikiola fagi sont brisées en hiver par
les Roitelets et les Mésanges qui en mangent la larve ou la nymphe. A en
croire Asa Fitch, un Passereau, Fringilla tristis L., serait un des plus
actifs destructeurs des larves de la Cécidomyie du Blé (C. tritici) aux
États-Unis. « Posé sur la tige, immédiatement au-dessous de l’épi, l’oi-
seau entr'ouvre les épillets avec son bec et en sort rapidement les
petites larves dont il se nourrit. Le même oiseau débarrasse ainsi suc-
cessivement plusieurs épis de leurs parasites, avant de terminer son
repas. » [auteur fait remarquer qu’un examen attentif des épis lui
démontra que l’oiseau dévorait en réalité les larves de Cécidomyies et
non point les grains de Blé.

Ann. SOC. Ent. Fr., LxIX, 1900. 27

4lS J.-J. KIEFFER. (238)

20 Araignces. B. Wagner à remarqué qu'une foule de Cécidomyies
du Blé (C. trilici) devenaient la proie des Araignées. Comme ces mou-
ches se rendent à la base des tiges des céréales pour y passer le jour
au repos, beaucoup d’entre elles se prennent aux toiles que les Arai-
enées ont tendues à ces endroits et y trouvent la mort.

3° Insectes. Voici en quels termes M. P. Marchal, d'accord en cela
avec tous les observateurs, a jugé le rôle des insectes parasites des Cé-
cidomyies : « Le rôle bienfaisant des parasites des Cécidomyies est ab-
solument capital. C’est grâce à eux que l’on voit le fléau s’enrayer su-
bitement, après avoir sévi de la facon la plus cruelle pour nos céréales.
Après le désastre causé en Vendée par la Cécidomyie destructive en
189%, après les ravages occasionnés dans le Poitou la même année par
la Cécidomyie de lAvoine, on vit en 1895 les Cécidomyies disparaître
d'une facon presque complète. Or l'énorme majorité des pupariums que
j'ai recueillis ou que j'ai reçus dans la première partie de l’année étaient
parasités » [l. c., p. 97].

On remarque en général qu'une année pendant laquelle les galles
d'une espèce de Cécidomyie étaient très nombreuses est suivie d’une
autre pendant laquelle ces mêmes galles sont devenues rares ou même
très rares. Les parasites se sont multipliés parallèlement aux insectes
cécidogènes, et, après avoir occasionné la perte de ceux-ci, ils disparais-
sent eux-mêmes, faute de victimes auxquelles ils pourraient confier
leurs œufs.

D'ordinaire les galles caduques demeurent fixées au support quand
elles sont parasilées. Veut-on par exemple obtenir l’éclosion de Mikiola
fagi Mart., il faudra recueillir, à la fin de l'automne ou dans le courant
de l'hiver, les galles tombées à terre et dont l'ouverture, correspondant
à leur point d'insertion, sera fermée par une mince pellicule blanche,
formée par la larve. Quant aux galles qui demeurent fixées aux feuilles
pendant l'hiver, elles ne renferment que des parasites ; ceux-ci en sor-
tiront par un trou circulaire que l’imago se forme dans la paroi de la
galle.

Les insectes parasites des Cécidomyies se répartissent entre les Hymé-
noptères et les Diptères. On pourrait encore y ajouter les Thrips qui
s’attaquent parfois aux œuis des Cécidomyies, comme Lintner l’a re-
marqué [380]. Les Hyménoptères fournissent le contingent ordinaire
des parasites des Cécidomyies; leurs représentants appartiennent d’ha-
bitude aux Chalcidites et Proctotrupides, rarement aux Braconides et
et aux Ichneumonides. Les larves de Chalcidites sont pour la plupart
ecloparasites: celles des autres familles, endoparasites. Le docteur

(239) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 419

P. Marchal a fait une observation très curieuse sur la biologie d’un
Proctotrupide, Trichacis remulus Walk., parasite des larves de Maye-
tiola destructor [445 bis].

Lorsqu'’elles sont encore jeunes et immobiles, non sorties des kystes
qui les contiennent, les larves de ce parasite sont toujours en connexion
intime avec le système nerveux de la Cécidomyie et y déterminent une
prolification consistant en un énorme bouquet de cellules claviformes
gigantesques, qui, à lui seul, remplit la majeure partie de la cavité gé-
nérale de la larve parasitée. Ces groupes de cellules géantes sont évi-
demment destinés à accumuler les matériaux nutritifs nécessaires au
parasite. Ce sont des sortes de galles animales internes produites par
l’action du Proctotrupide.

Quant aux Diptères, nous avons vu, en traitant de la biologie des
larves, que les représentants du genre Lestodiplosis sont zoophages et
vivent ordinairement aux dépens des larves ou des nymphes d’autres
Cécidomyies.

4° Helninthes. Les Cécidomyies sont parfois infestées aussi par des
Nématodes. On peut trouver ces derniers dans la larve et dans l’insecte
parfait.

La première indication d’un Nématode vivant dans le corps d’une
larve de Cécidomyie est due à Leuckart (!). Cet auteur découvrit le
type du genre Asconema, A. gibbosum Lk., dans les larves d’une Céci-
domyie vivant à terre au milieu des aiguilles de Pin en décomposition,
et qu'il appelle par erreur Cecidomyia pini (?). I] supposa que les jeunes
Asconema pénètrent par l’anus dans les larves de la Cécidomyie. Dans
mon travail sur le Groupe Epidosis paru en 1894 (p. 143), j'ai indiqué
qu’une anguillule de très grande taille s’est détachée d’une larve de
Winnertzia, au moment où j’humectai cette dernière. Plus récemment,
en 1897, M. P. Marchal publia l'observation suivante : « Sur de jeunes
Blés attaqués par la Cécidomyie destructive, il y avait un certain nom-
bre de larves atrophiées, fortement rétractées dans leur puparium qui
était lui-même plissé et le plus souvent d’une coloration pâle; d’autres
étaient ridées et petites sans avoir formé de puparium.

Ces larves étaient entourées d’une couche de matière gélatineuse dans
laquelle se trouvaient de nombreux Nématodes, et ces vers étaient en
rapport direct avec les larves contre lesquelles ils étaient accolés et

(1) Zoologischer Anzeiger, 1886, p. 745.

(2) C'est probablement de Criptodiplosis brachyntera qu'il s’agit; la larve
de cette espèce se trouve en effet parmi les aiguilles du Pin ou entreles feuilles
des mousses pendant l'hiver.

420 J.-J. KIEFFER. (240)

auxquelles ils adhéraient parfois. Quelques-uns même furent trouvés
à l'intérieur des pupariums; mais je n'ai pu en découvrir à l’intérieur
des larves; certains pupariums ne renfermaient plus qu'un magma
dans lequel s’agitaient une énorme quantité de ces animaux. Quelle
que puisse être la relation de ces Nématodes avec les larves des Céci-
domyies, il importe de signaler les intéressantes modifications de ces
dernières. Les larves avortées présentaient de très grandes modifica-
tions dans leur spatule sternale, et lon rencontrait nettement chez
elles, au lieu de la spatule bifurquée, la spatule hastiforme et toutes
les formes intermédiaires entre elle et la spatule bifurquée.

Chez ces mêmes larves atrophiées, nous voyons l'extrémité posté-
rieure du segment anal subir également des variations corrélatives
conformes à celles présentées par la Cécidomyie de lAvoine, si bien
que chez certaines on voit les papilles dorsales du segment anal s’im-
planter directement sur lui, sans l'intermédiaire du processus bilobé
que l’on trouve normalement chez la Cécid. destructive » [L.c.p.96-97].

Quant à l’ênsecte parfait, j'ai signalé en 1891 [273, p. 266, fig.] la
présence d’Anguillules parasites dans une femelle de Wäinnertzia ci-
trina Kieff., que j'avais obtenue d’éclosion. Étourdie par la nitroben-
zine, cette Cécidomyie avait émis, par son oviducte, un faisceau com-
pact d’Anguillules qui s’agitèrent vivement après avoir été humectées.
Après avoir décapité le Diptère, je vis également des Nématodes sortir
de son cou. Plus tard, en 1894, j'ajoutai que j'avais observé la même
chose pour diverses autres espèces du même genre. Tout récemment
j'ai constaté la présence des mêmes Nématodes dans le corps d’une
Cécidomyie vivant à l’état larvaire dans les fleurs et les fruits du
Genêt mais se rendant en terre pour la métamorphose, Choristo-
neura sarothammi Kieff. J'ai examiné un grand nombre de femelles,
toutes avaient la cavité générale remplie de ces vers filiformes, à tel
point qu'il me fut impossible de trouver un seul œuf chez les exem-
plaires observés. Pour cette dernière espèce j'ai remarqué encore la
présence de corps ellipsoïdaux qui paraissaient d’abord sans mouve-
ment et qui finirent par se dérouler en offrant alors la forme des au-
tres Anguillules. M. Giard, qui a observé en 1893 un cas de parasi-
tisme similaire chez une Cécidomyie à larve subcorticale, ajoute les ”
détails complémentaires suivants [173]: « Une dissection délicate montre
que les Anguillules émises par l’Insecte sont des embryons appartenant
à un Nématode du genre Asconema, voisin des Sphaerularia. Le para-
site adulte, avec sa progéniture, remplit presque toute la cavité géné-
rale de la Cécidomyie. Les ovaires du Diptère sont atrophiés par cas-
tration parasitaire. Les œufs de l’Asconema se développent jusqu’à la

(241) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie, 421

formation de l'embryon à l’intérieur de l’Insecte, et celui-ci pond les
petites Anguillules en plongeant sa longue tarière entre les fissures
des écorces pourries et humides, de même que les Criquets infestés
par des Gordius vont pondre ces parasites dans les mares ou les ruis-
seaux où ils pourront se développer. Je n’ai pas trouvé d’Anguillules
dans le tube digestif et je crois que celles que M. Kieffer a vu sortir
par le cou provenaient de la cavité générale. Mis en liberté, les em-
bryons d’Asconema se comportent comme ceux de Sphaerularia bombi,
c’est-à-dire qu'ils pénètrent dans les larves de Cécidomyies, vraisem-
blablement après avoir subi une mue et acquis des organes génitaux. »
J'ai observé encore [294, p. 5] dans le corps de Joannisia aurantiaca
Kieff., une autre sorte de Nématode, non plus filiforme comme les
précédents, mais en forme de virgule ou presque de têtard de Gre-
nouille, avec l'extrémité antérieure du corps élargi et obtuse. Cette
espèce aussi avait produit chez son hôte l’atrophie des ovaires.

S 4.
ÉLEVAGE ET CONSERVATION DES CÉCIDOMYIES.

L'étude des Cécidomyies trouverait sans doute plus d'amateurs, si
on ne s’exagérait pas les difficultés de l'élevage des larves et de la
conservation de l’insecte parfait. Bose d’Antic écrivait déjà en 1838 (!)
qu'un grand nombre de Cécidomyies gallicoles demeuraient encore
inconnues parce que « la difficulté d'obtenir l’insecte parfait des larves
qu'on renferme à la maison et l'impossibilité de les conserver entiers
dans les collections les ont fait négliger par les naturalistes ». L’é-
levage de ces insectes demande de la patience, il est vrai; mais, pour la
plupart des espèces, il se fait sans grande difficulté. Nous allons indi-
quer la méthode que nous avons suivie depuis 1885. Disons tout d’a-
bord que si l’on veut se servir de l’insecte parfait pour des essais de
ponte, l'élevage devra se faire en plein air; en dehors de ce cas. il
pourra avoir lieu indifféremment dans une chambre froide ou dans
une chambre chauffée. Le grand froid ne nuit nullement aux larves;
il n’en est pas de même de la grande chaleur; des vases à éclosion
que j'ai exposés au soleil, n’ont donné que des résultats négatifs.

I. — Élevage des Cécidomyies.

Il faut avant tout s'assurer si les larves qu’on veut mener à éclosion
sont arrivées à leur maturité ou du moins si elles en sont proches.

(1) Nouveau cours complet d'Agriculture. Paris, Roret, t. XV, p. 412.

492 J.-J. KiEFFER. (242)

Avec des larves jeunes on n’arrivera ordinairement à aucun résultat.
La raison en est qu’on ne peut pas ici, comme pour les chenilles des
Lépidoptères, donner chaque jour, aux larves qu’on veut élever, des
plantes fraiches pour les nourrir; leur vie est liée intimement à celle
de la galle qu'elles habitent ou de l'organe végétal ou animal auquel
elles sont fixées ; ceux-ci viennent-ils à se dessécher ou à se couvrir
de moisissure, c'en est fait aussi des insectes qui y sont renfermés.
Il faut donc faire choix de larves mûres ou à peu près mûres, afin
que la plante nourricière puisse demeurer fraiche jusqu’à leur sortie ou
leur métamorphose. Mais comment reconnaître qu'une larve est arrivée
à sa maturité? C'est principalement d’après la taille de l’insecte, me-
surant en moyenne de 2 à 3 mill. à la maturité, que l’on pourra en
juger. L'examen à la loupe indiquera encore la présence de la spatule,
qui est un caractère particulier à l’état de maturité et manque rarement.
Si donc en ouvrant une galle, on y trouve des larves encore très peti-
tes, il faut en remettre la récolte à une huitaine de jours plus tard.

Il y a deux manières de récolter et de conserver les galles dont on
veut obtenir les larves ou linsecte parfait. La première, en même
temps la plus simple et que l’on peut employer dans la plupart des
cas, consiste à les cueillir avec une partie de leur substrat, par exem-
ple la feuille avec les galles qu’elle porte, et de les déposer dans une
boîte en fer-blanc, dont on se sera muni préalablement. Dans une boite
en métal, lors même que la fermeture n’est pas hermétique, les plantes
et les galles demeurent suffisamment fraiches pendant quelques jours,
soit jusqu’à la sortie des larves ou de l’imago. Cette méthode a encore
l'avantage d'empêcher les larves de s'échapper à leur sortie des galles,
avant qu'on ait eu le temps de les apercevoir. Il suffira d'ouvrir la
boite chaque matin; si des larves opèrent leur migration, on les trou-
vera ordinairement sur le fond de la boîte, parfois agglomérées. Bien
des espèces se métamorphosant d'habitude en terre, par exemple Per-
risia mali, Oligotrophus capreae, ete., se fixeront même à la paroi in-
terne du métal, s’y formeront un cocon ets’y transformeront en nymphe
et en insecte parfait.

La seconde méthode consiste à couper des rameaux de la plante avec
les galles et à plonger leur partie inférieure dans un vase rempli d’eau,
el à col assez étroit pour que les larves, sortant des galles, ne puissent
y tomber. Pour maintenir le végétal plus longtemps frais, il sera bon
de le couper sous l’eau, à une hauteur de 4 à 5 cent. au-dessus de Ja
première section. Notons encore qu'il faut bien examiner les plantes,
afin de s'assurer qu'elles ne portent pas d’autres sortes de galles, ou
bien encore des Urédinées ou des Aphides servant de nourriture à une

(243) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 423

autre espèce de Cécidomyie. Ce vase avec les plantes sera posé sur une
feuille de papier blanc ou sur le fond d’une boîte en carton. Cette mé-
thode à un double inconvénient : elle oblige d’abord à examiner le ré-
cipient plusieurs fois par jour, afin de voir si les larves ou les insectes
ailés n’opèrent pas leur sortie; et, d'autre part, il y aura toujours un
certain nombre de larves sauteuses ou d'insectes ailés qui réussiront
à s'échapper. On pourra obvier à ce dernier inconvénient, quant aux
insectes ailés, si l'on veut se donner la peine d’entourer les plantes
d’une gaze légère.

Quand les larves quittent leur plante nourricière, il faut s'assurer si
elles appartiennent toutes à la même espèce, c’est-à-dire si elles ont
la même forme, la même couleur et les mêmes dimensions. Dans le
cas contraire, on ouvrira une ou plusieurs galles, afin de s'assurer si,
parmi les larves qui v demeurent encore, on trouve réunies les deux
ou trois espèces dont on a constaté la présence.

Il s’agit ensuite de mettre les larves en contact avec la terre dans la-
quelle aura lieu leur métamorphose. A cette fin, on les touche avec
l'extrémité d’un chaume ou de la pointe d’un crayon légèrement hu-
mectée; il sera facile alors de les saisir et de les déposer là où l’on
voudra. Quand on ne connait pas le genre auquel appartiennent les
larves, il faut évidemment se garder de mettre avec elles, dans le même
récipient, des larves appartenant à une autre espèce ou à un autre
genre également inconnu. Mais si l’on est renseigné à ce sujet, il n'y
aura aucun inconvénient à mettre ensemble des larves appartenant à
des genres différents, par exemple des larves de Contarinia avec celles
de Perrisia, de Clinodiplosis, de Bremia, etc.

Quant au récipient, je me sers de petits pots à fleurs, remplis de terre
et recouverts avec une cloche en verre (!); cette dernière n’est autre
chose qu’un verre à calice, dont le pied a été brisé. Fr. Lôw a indiqué
qu'on doit avoir soin de chauffer préalablement la terre que l’on em-
ploie, afin d’y faire périr toute autre larve, s’il devait s’y en trouver.
J'omets cette précaution, parce que la terre dont je remplis les réci-
pients est recueillie dans un endroit situé à distance de toute plante
pouvant héberger les larves de Cécidomyies. Comme il est de toute
nécessité que cette terre soit maintenue humide, on devra l’humecter
de temps à autre. Certaines larves ne pénètrent pas immédiatement en
terre, mais veulent demeurer quelques semaines à la surface, sous les

(1) M. le docteur Marchal emploie des « pots à fleurs recouverts d'un court
manchon de verre fermé à son extrémité supérieure par un rond de mousse-
line maintenu à l’aide d’un caoutchouc ».

42% J.-J. KiIEFFER. (244)

feuilles mortes ou sous la mousse. Il faudra donc, quand les larves
voyagent à la surface de la terre sans vouloir y pénétrer, couvrir celle-
ci de feuilles mortes ou de mousses qu’on aura examinées soigneuse-
ment à l’avance, afin de s'assurer qu'elles n’hébergent pas déjà des
larves de Cécidomyies. Quelques espèces habitant les marécages deman-
dent à avoir les conditions qu'elles trouveraient à l’état de liberté, à sa-
voir, des Sphaignes imprégnées d’eau ou même immergées. Enfin un
numéro dont on aura marqué le vase ou la cloche qui le recouvre, em-
pêchera qu'il y ait confusion; le même numéro, inscrit dans un cahier,
sera accompagné des renseignements nécessaires, tels que le nom de
la plante, la forme de la galle, ct la date de sortie des larves. Au bout
de huit à quinze jours, les insectes ailés pourront faire leur apparition.

Si au bout de 3 ou 4 semaines aucun insecte ailé n’a fait son appa-
rition, il faut en conclure que léclosion n'aura lieu qu'au printemps
ou à l'été suivant, à moins qu'on n’opère dans une chambre chauffée,
où les éclosions commencent dès le mois de janvier et parfois même
plus tôt.

Quand linsecte parfait apparait, il faut le laisser prendre ses ébats
pendant une heure ou deux, afin qu'il ait atteint sa coloration com-
plète, puis on l’asphyxie. Dans ce but, je verse une minime goutte-
lette de nitrobenzine sur une feuille de papier blane et je l’étends
afin que l’évaporation se produise plus rapidement et que les insectes
n’y puissent être retenus; saisissant ensuite délicatement, mais sans la
retourner ni l'incliner, la cloche de verre sous laquelle les Diptères
prennent leurs ébats ou à la surface de laquelle ils se sont posés, je la
mets sur le papier, à l'endroit où la nitrobenzine commence à s'éva-
porer (1). Dans l’espace d’une ou de deux minutes, tous les insectes
tombent étourdis sur le papier; on peut alors les saisir, les examiner
au microscope (?) ou les préparer pour la conservation. On peut aussi
remplacer la nitrobenzine par la fumée de tabac; une bouffée de cette
fumée suffit pour asphyxier l’insecte parfait, tandis qu'elle ne nuit pas
aux larves.

Nous venons de considérer le cas d'espèces qui se métamorphosent
en terre. S'agit-il, au contraire, de larves qui se transforment dans la
galle où dans l’organe qui les nourrit, et dans le courant de la même
année, il faut alors, si c’est possible, attendre pour la récolte que la

(1) Dans l'intervalle, on recouvrira le pot à éclosion avec une autre cloche,
pour empêcher que les Diptères posés sur la terre ne s’échappent.

(2) L'examen au microscope doit se faire de préférence après que l'insecte a
trempé pendant quelques heures dans l'alcool, parce qu'il est alors moins mou
et il n'y à plus à craindre de l'écraser.

(245) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 425

nymphose ait eu lieu; il suffira de conserver ces galles dans une boîte
en fer-blanc ou sur de la terre humide et sous cloche; les Diptères en
sortiront en peu de jours. Si on les récolte avant la nymphose, il faut
couper les rameaux et les plonger dans un vase d’eau, comme il a été
expliqué plus haut.

La métamorphose qui se fait dans la galle ne doit-elle avoir lieu
que l’année suivante, il faut alors, si ces galles sont persistantes, comme
cela à lieu pour les renflements des Saules dus aux Rhabdophaga, ceux
des Ronces, des Eryngium et de diverses autres Ombellifères, dus aux
Lasioptera, ceux des graines de Tanacetum, d'Achillea, de Matricaria
dus aux Clinorrhyncha, etc., ne les récolter qu’à la fin de l'hiver ou
au commencement du printemps et les traiter comme il vient d’être dit
pour les espèces qui se transforment dans la galle de la même année.
Certaines plantes sont difficiles à maintenir fraiches, telles sont le Ge-
névrier, l’I, les Chênes verts ; aussi l'élevage des Cécidomyies qui for-
ment des galles sur ces espèces, ne pourra-t-il guère réussir que si on
attend la nymphose.

Si les galles sont caduques, comme c’est le cas, par exemple, pour
celles de Mikiola fagi Hart., Oligotrophus bursarius Br., O0. betulae
Winn., 0. Reaumurianus Fr. Lw., on les mettra dès l’automne sur de
la terre maintenue humide et on pourra les recouvrir de mousse ou
même d'un peu de terre, afin d'empêcher qu’elles ne se dessèchent ou
ne se couvrent de moisissure.

Après avoir obtenu l’insecte parfait, il faut avoir soin de recueillir
aussi les dépouilles nymphales qu’on verra fixées par leur partie infé-
rieure dans ja terre ou dans la galle, après la sortie de l’imago. Comme
nous l'avons dit en traitant de la nymphe, elles offrent des caractères
très utiles pour la détermination des espèces.

Si l’on veut se procurer les nymphes vivantes et si la métamorphose a
lieu dans les galles, il n’y a qu'a ouvrir une de celles-ci, quand les éclo-
sions commencent, ou bien onsaisit une nymphe avec une épingle humec-
tée, au moment où elle se hisse hors de sa prison. S'agit-il au contraire
d'espèces quise métamorphosent en terre, on pourra employer le moyen
suivant. On prend un tube de verre long d'environ à centimètres et
large de 4 centimètre ; après l'avoir rempli de terre humide, dans sa
moitié inférieure, on pratique entre la paroi du verre et la masse de
terre, au moyen d’une aiguille, des enfoncements étroits mais profonds,
puis on y dépose les larves qui doivent se métamorphoser. Au bout de
quelques instants la plupart des insectes auront pénétré dans ces fos-
settes et comme elles y demeurent visibles à travers la paroi du verre,
on n'aura qu’à les sortir lorsqu'elles seront transformées en nymphes.

126 J.-J. KiErrer. 246)

Si les larves ne doivent se métamorphoser que l’année suivante, le
procédé sera encore le même, avec cette différence que le tube devra
ôtre ouvert aux deux bouts (1), et la moitié inférieure qui contient
la terre avec les larves plongera dans la terre du récipient dans lequel
on à mis les autres larves. Quand, au printemps, les éclosions commen-
ceront à se produire, on sortira le tube et on y trouvera les nymphes
formées.

IL — Conservation des Cécidomyies.

En se desséchant, les Cécidomyies perdent leur forme et leurs cou-
leurs. Leur corps se racoquille et revêt une teinte sombre; les nodo-
sités des antennes se rétrécissent, prennent un autre aspect et devien-

nent parois difficiles à distinguer les unes des autres. Ajoutons à cela .

que la petitesse de ces Diptères ne permet pas de reconnaitre leurs ca-
ractères au moyen d’une loupe et exige l'emploi du microscope. Voilà
pourquoi lancienne méthode de piquer les Cécidomyies en leur tra-
versant le thorax au moyen d’une épingle, comme cela a lieu pour les
autres Diptères, est à rejeter comme défectueuse. Il en est de même
de la méthode consistant à les piquer à l'extrémité d’un fil de platine
ou à les coller, car elle ne permet pas davantage l'examen au micros-
cope. Les types que l’on conserve dans les Musées, et qui sont piqués
ou collés, n’ont donc à peu près aucune signification, tant qu'on ne les
aura pas rendus aptes à être examinés au microscope. Cela est surtout
le cas pour les types de Meigen et de Walker, dont on ne peut, dans
la plupart des cas, pas même reconnaitre le genre, parce que les dia-
gnoses sont absolument insuffisantes (?).

(1) Si la terre y est un peu tassée, elle ne tombera pas hors du tube ; dans le
cas contraire, on peut se servir d'un bouchon fermant imparfaitement et lais-
sant ainsi une communication entre la terre du tube et celle du vase.

(2) C'est pour ce motif qu'on n'a pas hésité, au Musée de Berlin, à ramollir
dans l'alcool et à extraire des épingles, les débris des types de H. Loew, bien
que les descriptions données par cet auteur soient plus détaillées que celles de
Meigen. On à pu ainsi les faire examiner au microscope et en donner une des-
cription plus détaillée. M. Brauer, de Vienne, m'a permis également de préparer
de la même facon deux types de la collection de Fr. Lüw, que j'avais désirés.
Au Muséum de Paris, où l'on conserve les types de Meigen, on n'a pas été d’a-
vis de permettre l'emploi de cette méthode. Les démarches que j'ai faites à ce
sujet m'ont obtenu seulement l'assurance qu'on me permettrait d'examiner
ces types à la loupe, si je voulais me rendre à Paris. Mais comme l’examen à
la loupe ne me permettrait guère d'en dire plus que ne l’a fait Meigen, ces types
continueront à être inutiles, en attendant que les années aient achevé de les

(247) Cécidomyides d'Europe et d’Algerie. 427

Pour conserver les Cécidomyies à l’état d’insecte parfait ou de nym-
phe, j'emploie le procédé suivant. Je mets les Diptères, après les avoir
asphyxiés, avec leurs nymphes, dans un petit tube en verre, étroit, long
d'environ 5 centimètres, et contenant de l'alcool additionné d’un peu de
glycérine.

Chaque tube porte le nom de l'espèce qu'il renferme. Ce procédé à
l'avantage de se faire rapidement et sans perte de temps, et de permet-
tre à tout moment l'examen au microscope. Il a d'autre part un dou-
ble inconvénient : les couleurs et les écailles disparaissent et l'alcool
demande à être renouvelé au bout de quelques années.

S'il s’agit de préparer d’après cette méthode des insectes piqués ou
collés sur papier, il suffit de les plonger pendant quelque temps dans
de l'alcool; puis on les détachera doucement, ce qui se fera sans dif-
ficulté, s'ils sont piqués à un fil de platine ou collés sur papier; mais
si leur thorax est traversé par une épingle, on devra couper celle-ci,
après le ramollissement, le plus près possible de lPinsecte; il arrivera
alors fréquemment que l’insecte se brisera en deux parties pendant
qu'on le détache de l’épingle.

Au Musée de Berlin, on conserve les Cécidomyies d’après un autre
procédé. L’insecte, qu'on a d’abord plongé quelque temps dans lal-
cool, après lui avoir enlevé une aile conservée à part, est déposé ensuite
sur une mince lamelle de verre (comme les lamelles couvre-objet), de
forme carrée, et mesurant 18 mill. de chaque côté. On laisse l'alcool
s'évaporer un peu, puis on le remplace par une gouttelette de glycé-
rine. S'il se forme alors des bulles d’air autour du Diptère, il faut les
faire disparaître en comprimant doucement. On aura soin d’étaler en-
suite l’aile de l’insecte et de donner à la tête, à l’oviduete ou à la pince,
une position permettant de bien distinguer ces parties. Cela fait, on
recouvre avec une autre lamelle mince et carrée, mesurant 12 à 45 mil].
de chaque côté, puis on met le tout sur un bout de papier portant le
nom de l’insecte et on le laisse ainsi pendant huit jours sous une clo-
che en verre, pour que l'alcool achève de s’'évaporer. On sera obligé
d'ajouter alors un peu de glycérine pour remplacer l'alcool qui s’est
évaporé. On termine en entourant la lamelle supérieure d’un bord de
« Gold: Size » (*)}. Au bout de 24 heures ce bord est suffisamment durci
pour qu'on puisse mettre la préparation dans un sachet de papier.

détériorer. Je suis obligé de relever cela ici, afin d'éviter le reproche d’avoir
ignoré les types, en considérant les espèces de Meïgen comme nomina nuda
n'ayant qu’un intérêt historique.

(1) Fabriqué par W.-M. West, Horton Lane, 15, Bradford, et fourni par
Klünne et Müller, Berlin, Luisenstrasse, 49.

128 J.-J. Kierrer. (248)

Ce sachet est fermé sur trois côtés et se Compose de deux bouts de
papier un peu épais, de forme carrée, distants l’un de l’autre d’envi-
ron 2 mill. et mesurant de chaque côté 2% mill. ; leur milieu est percé
d'une ouverture circulaire, dont le diamètre mesure 10 mill. Après
avoir déposé la préparation dans ce sachet, qu’on pourra faire fabri-
quer par un relieur quelconque (1), on transperce le côté demeuré ou-
vert avec une forte épingle qui empêche ainsi la préparation de glisser
hors du sachet et permet de la ranger dans la Collection.

Cette méthode à également deux inconvénients : d’une part, elle de-
mande beaucoup de temps et de soins, et d'autre part, l’insecte ne peut
être examiné que sous la forme qu'on lui a donnée une fois pour
toutes.

Quant à la conservation des peaux larvaires (?) et des dépouilles
nymphales, on emploie, au Musée de Berlin, le même procédé que pour
les insectes parfaits. Je trouve plus avantageux de conserver ces su-
jets d'étude dans de minimes sachets de papier portant chacun le nom
de l'espèce qu'il renferme. On peut, de cette façon, examiner à tout
moment ces objets au microscope, en ayant soin de les laisser, pendant
quelques instants, plongés dans une gouttelette d’eau sur la lamelle porte-
objet, afin de les ramollir.

S
CLASSIFICATION DES CÉCIDOMYIES.

Nous avons vu au commencement de ce travail (p. 2) comment les
insectes qui nous occupent ont été rangés primitivement dans le genre
Tipula, par Linné, parmi les Chironomus, par Fabricius, parmi les
Scatopse, par Geoffroy, et que Meigen a créé pour eux un genre (Ceci-
domyia) et Zetterstedt, une famille (Cecidomyzidae). I nous reste main-
tenant à classer cette famille, c’est-à-dire à chercher la place qu’elle
doit occuper dans l’ordre des Diptères; puis, après avoir examiné
ainsi ses affinités avec les autres familles du même ordre, nous consi-
dérerons les affinités de ses représentants entre eux, en établissant la
division des Cécidomyies.

(1) Le relieur Hoffmann, Berlin, Müllerstr. 160, les vendait en 1891 à 15 francs
le mille.

(2) Nous avons indiqué, en parlant de la larve, comment on prépare ces
peaux.

(249) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 429
I. — Rapports des Cécidomyies avec les autres familles
des Diptères.

Le tableau suivant indique la place à assigner aux Cécidomyies
dans le cadre des Diptères proboscides.

1. Antennes composées seulement de trois articles. (Brachycères).

— Articles des antennes au minimum de six (Nematocères). 2
2. Prothorax séparé du mésothorax par une suture en forme

de bourrelet transversal. Ailes à nervures nombreuses.

Dune ve ue » ST TD DS a CE ee Tipulidae
— Prothorax et mésothorax non séparés par un bourrelet

iransversal rs ER RE RL LL Lee 3
3. Hanches plus ou moins prolongées. Tibias terminés par

deux'éperons + OcelleSeprécenis ARMOR EE 4
— Hanches non prolongées. Tibias inermes, rarement avec

éperons et alors les ocelles font défaut................ b)
4. Hanches fortement prolongées.............. Mycetophilidae
— Hanches faiblement prolongées..................... Sciaridae
>. Avec une cellule discoidale et des ocelles. Antennes nues

et subuléess: ent RS NE PRET RON COR | Rhyphidae
— La cellule discoïdale manque, ou bien, si elle est présente,

les oceléS fon Fate A TIRER TT ENS 27 6
0: Nervure costale bordantioute d'anee e e. 7
— Nervure costale nulle au bord postérieur de l’aile......... 9
7. Ailes à nervures peu nombreuses (six longitudinales au

maximum et une seule transversale). Avec ou sans

OCÉLLESEL LEARN 1. ECRIRE RAI Cecidomyidae
— Ailes à nervures nombreuses (plus de six longitudinales et

plus; d'une: transversale). 08 RME Eee: 8
8. Ailes formant toit au repos, pointues au bout et n'ayant de

nervures transversales qu’à la base.......... Psychodidae
— Ailes planes au repos, arrondies au bout, avec des ner-

vures transversales à la base et au milieu........ Culicidae
9. Antennes plus courtes que le thorax, à articles plus gros

que longs et dépourvues de panache et de verticille... 10

— Antennes aussilongues ou plus longues que le thorax, com-

430 J.-J. KIEFFER. (250)

posées d'articles ordinairement munis d’un panache chez
le mâle ou d’un verticille chez la femelle ; ou bien les ar-
ticles sont plus longs que gros. Ocelles nuls. Chironomidae

10. Avec ocelles. Cuisses un peu épaisses. .......... Bibionidae

— Sans ocelles, Tibias et tarses élargis et déprimés.... Simulidar

En considérant les larves ou les nymphes, leur place dans l’ordre
des Diptères sera indiquée par le tableau suivant, d'après le système
de Brauer et Schiner.

1. Larve avec une tête complètement différenciée ou du moins
avec une charpente céphalique plus ou moins rudimen-
taire et chitineuse. Nympbhelibre et en momie, ou bien ren-
fermée dans la peau larvaire; celle-ci se fendant au mo-
ment de l’éclosion, sous forme de fente dorsale ou en
forme de T, du moins dans la grande majorité des cas.
(OTrthorhaphes)., CH. SARA MERE EE

1

— Larve acéphale, c’est-à-dire sans tête différenciée et
même sans rudiment de charpente céphalique; mandi-
bules souvent indiquées par une paire de crochets chiti-
neux et parallèles servant à forer et impropres à la mas-
tication. Nymphe dormante, renfermée toujours dans la
peau larvaire ou pupe; celle-ci cylindrique, arrondie
aux deux bouts, s’ouvrant circulairement, au moment
de l’éclosion, au pôle antérieur, et jamais en fente dor-
SN CR Re LES M LR EL eu 2 LE Cyclorhapha

2. Mandibules broyeuses, c’est-à-dire se mouvant l’une vers
l'autre, ou bien rudimentaires. (Nematocera)........ 3

— Mandibules se mouvant parallèlement ou en dehors, en
forme de crochets ; tête allongée.............. Brachycera

3. Mandibules rudimentaires. Tête non différenciée, mais avec
une charpente plus ou moins chiniteuse et rudimentaire
et avec deux palpes. Corps péripneustique, de 14 seg-
ments, avec une double tache oculaire et ordinairement
une spatule sternale. Nymphe libre, rarement dans la
peau larvaire. (Oligoneura):...:7.. . Cecidomyidae

— Mandibules bien développées. ......................... 4

4. Tôte bien différenciée et arrondie, ordinairement pourvue

(251) Cécidomyides d'Europe et d’Algerie. 431
d'yeux. Corps de 12 à 13 segments. Nymphe libre. (Eu-
DERÉM ANS... LUI TM ; b)

— Tête moins développée, à pièces libres en partie et for-
mant seulement une charpente mandibulaire. (Poly-

ROUTIERS RERO RNER PE R ALERT ON PET PAR 0 15
ÿ. Second segment somatique avec un ou deux appendices

faisantioffice de pSetdgpode- RAR MON JEMINNT ee 6
— Second segment somatique sans pseudopode........... 7

6. Appendice du 2 segment unique, formant un tube en cône
tronqué. Corps gros, plus mince au milieu; tête hori-
zontale, avec une paire de taches oculaires sur chaque
côté. NYMpPhe ÉCEMANE TER PES RAI Simulidae

— Appendice unique ou double, non en forme de tube.
Larve amphipneustique ou avec vessies à trachées. Tête
inclinée et pourvue d’yeux. Nymphe dormante ou se
MOUVANCE END FOOT PUR PR PSE Chironomidae

7. Céphalothorax et les cinq segments suivants munis chacun,
en dessous, d’une ventouse médiane. Corps en forme
de Cloporte, lisse et dur. Tête pourvue d’yeux et connée
aux segments suivants. Tous les segments munis, de
chaque côté, d’un appendice conique et velu..........
Blepharoceridae

— Point de ventouses sur le dessous des segments; corps

autrement CORGUMECRPAE AL TAROT UMR ANT ART 8
8. Larve péripneustiQue ee PR AE Ier" 9
— Larve amphipneustique ou avec vessies à trachées...... 10

d-Larve-nue”Nymphe dora entrent LeE ee
Mycetophilidae(àl'exception de Mycetobia)et Sciaridae

— Larve velue, à tête inclinée. Nymphe dormante... Bibionidae

10. Corps en forme de serpent; tête grêle ; dernier segment
muni de deux pointes......... Rhyphidae (et Mycetobia)

— Corps non anguilluliforme ; tête pourvue d’yeux........ 11
A1. Tête horizontale, les segments suivants épaissis ; extrémité

postérieure du corps avec appendices. Nymphe nageante.
Larve amphipneustique ou avec vessies à trachées. Culicidae

— Tête inclinée. Larve toujours amphipneustique......... CRE

132 J.-J. KIEFFER. (252)

12. Extrémité postérieure du corps avec un tube respiratoire
court. NympheAormantp 2e RER Psychodidae

— Extrémité postérieure du corps avec un tube respiratoire
long et filiforme. Nymphe munie, sur le devant, d'un
long tube respiratoire..." 1.1 "#02 Ptychopteridae

13. Mandibules minces, en forme de crochets et ordinairement
simples; palpes très grands, coniques el rétractiles.
2e segment souvent avec un pseudopode rétractile. Corps
amphipneustiques cs... UE Limnobidae
— Mandibules grosses, fortement dentées au côté interne ;
mâchoiresavec un palpe court. Jamais de pseudopode.Ex-
trémité postérieure du corps souvent avec des appen-
dices étoilés autour des stigmates. Larve méta- ou am-
pPhiDREUSIQUET LOS EME PR RAC ET Tipulidae

On a constaté que, chez les Diptères, le nombre des nervures des ailes
augmente dans la même proportion que celui des articles des antennes
diminue. Chez les Brachycères, les ailes sont richement pourvues de
nervures, mais les antennes ne se composent que de trois articles. Dans
la famille des Cécidomyies nous trouvons au contraire, d’une part, la
plus faible nervationalaire, et, d'autre part, le plus grand nombre d’ar-
ticles antennaires. C’est pour ce motif qu’on a formé pour elle la
tribu des Oligoneura, et qu’on la place au commencement de l'ordre
des Diptères. Chez Leptosyna Kieff., les balanciers sont démesurément
allongés, comprimés, à bords ciliés, à surface couverte de poils mi-
croscopiques comme ceux de l'aile; ils offrent un peu l'apparence d’une
seconde paire d'ailes.

Nous considérons donc la famille des Cécidomyies comme formant le
premier anneau de la chaine des Diptères. Les familles qui la suivent
de plus près sont celles des Sciarides et des Bibionides, puis, d’une fa-
con moins rapprochée, celle des Chironomides, enfin d’une facon plus
éloignée encore celles des Psychodides et des Ptychoptérides.

En effet, si nous la comparons d’abord à celle des Sciaridae, nous
remarquons que la nervation de ces dernières est la même que celle
des derniers genres de Cécidomyies, tels que Lestremia et Catocha;
c'est pour ce motif que Meigen n’a pas cru devoir séparer Lestremia
de Sciara, en 1818. L'abdomen, et notamment l’oviducte de la femelle
et la pince anale du mâle, sont formés de la même facon chez les Les-
trémines et chez les Sciarides. Si ces dernières ont ordinairement des
antennes à articles cylindriques et sans verticilles, ont sait que cette

(253) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 433

forme se retrouve aussi dans les genres Asphondylia et Polystepha qui
appartiennent aux Cécidomyies. De même, si les Sciarides ont d’habi-
tude une pilosité alaire microscopique et non appliquée, on n’ignore pas
que, d’une part, cette même pilosité se retrouve chez plusieurs Céci-
domyies appartenant aux Hétéropézines, et que d’autre part, certaines
Sciarides, par exemple Trichosia et Metangela, ont les ailes velues
comme les Cécidomyies. Nous n’avons pour les séparer les unes des au-
tres, à l’état d’imago, qu'un seul caractère à peu près constant : chez
les Sciarides, les hanches sont un peu prolongées et les tibias armés
d’éperons à leur extrémité; mais encore ce dernier caractère se re-
trouve-t-il chez une Cécidomyie, Choristoneura sarothamni Kief.;
j'aurais, pour ce motif, exelu cetinsecte de la famille des Cécidomyies,
si sa larve n’offrait pas tous les caractères de ces dernières.

Le genre Zygoneura, que l’on a classé tantôt parmi les Cécidomyies
tantôt parmi les Sciarides, se rapproche des premières non seulement
par sa nervation alaire, mais encore par ses antennes moniliformes,
munies de verticilles, et par ses tibias qui, chez Z. tenella H. Lw., sont
à peu près inermes. C’est done avec raison que H. Loew a écrit : « On
pourrait placer Zygoneura parmi les Cécidomyies comme genre formant
frontière, puisque Z, tenella a les éperons extrêmement faibles et qu’on
trouve aussi chez Lasioptera un vestige de ces éperons, leur tibia
portant à leur extrémité une soie plus forte. La principale différence
entre les Zygoneura et les Cécidomyies qui s’en rapprochent le plus,
consiste dans la pilosité alaire qui, chez le premier, est uniformément
microscopique (1); Zygoneura est, pour ce motif, exclu des Cécidomyies,
ce qui paraît parfaitement justifié si on élève le genre Sciara au rang
d’une famille... Mais si on place le genre Sciara parmi les Mycétophi-
lides, il me paraitrait plus rationnel de classer Zygoneura parmi les
Cécidomyies que parmi les Mycétophilides. Ce n’est qu'après la décou-
verte et l'examen de l'état larvaire de cet insecte, qu’on pourra tran-
cher définitivement la question » [402 p. 19]. Nous sommes entierement
de l'avis de H. Loew : les larves des Sciarides et des Mycétophilides
avec leur tête ronde et armée de mandibules broyeuses, se distinguent
à première vue de celles des Cécidomyies; il faut donc attendre la
découverte de la larve de Zygoneura pour assigner avec certitude une
place à ce genre, et nous considérons provisoirement cet insecte comme
appartenant aux Sciarides, mais formant frontière avec les Cécidomyies.
Nous en dirons autant du genre Planetella Westw. (Planetes Walk.)

(1) Cette difference n'existe pas, puisqu'on connait plusieurs genres de Cé-
cidomyies à pilosité alaire microscopique,
Ann. Soc. Ent. Fr., LxIxX, 1900. 28

134 J.-J. KIEFFER. (25%)

que Walker et Westwood classaient parmi les Cécidomyies, tandis que
H. Loew n'ose se prononcer, et que Schiner rejette cet insecte parmi
les Sciarides.

Si nous comparons ensuite la famille qui nous occupe avec celle des
Bibionidae, nous trouvons une affinité tout aussi frappante entre les
mêmes genres Lestremia et Catocha d’une part, et le groupe des Scato-
psines d'autre part. Ici encore la nervation alaire est la même; en outre,
les tibias sont inermes ; la forme des antennes des Scatopse se retrouve
dans le genre Choristoneura qui appartient aux Cécidomyies gallicoles
et dont les articles du funicule sont, même chez le mâle, beaucoup plus
gros que longs, rapprochés et dépourvus de verticilles, tandis que le
scape est très allongé et l’article suivant obconique; enfin la métamor-
phose, qui a lieu dans une pupe, chez Scatopse, se fait de la même fa-
con chez plusieurs Cécidomyies, à l'exclusion de toutes les autres fa-
milles des Diptères nématocères. Cette parenté qui relie les deux
familles explique comment Anarete Hal. a pu être classé par un
diptérologiste éminent, H. Læw, parmi les Lestrémines, dans la famille
des Cécidomyies, et par un autre diptérologiste non moins compétent,
Schiner, parmi les Scatopsines, dans la famille des Bibionides. Ce der-
nier écrit à ce sujet : « Il me parait tout à fait impossible de trouver,
pour Anarete, une place dans la famille des Cécidomyies. La présence
des ocelles, la forme des antennes, la nervation alaire, le bord inférieur
de l'aile ressortant fortement à la base et le facies général le défendent
absolument. Je comprendrais encore plutôt qu’on leur assignât une
place parmi les Sciarmes comme l’a fait Zetterstedt » [659, p. 354, note].
Tous les motifs indiqués par Schiner sont insuffisants. Toutes les Les-
trémines sont pourvues d’ocelles, ce que Schiner ignorait; quant à la
forme des antennes, nous venons de voir qu’un genre de Cécidomyies
gallicoles les a conformées comme les Scatopsines; du reste, les
antennes d’Anarete albipennis ressemblent à celles de Catocha et nulle-
ment à celles des Scatopse ; pour la ner vation alaire, on la retrouve chez
Lestremia et Catocha; il en est de même de leur facies général; enfin
leur base alaire ressort à peine plus brusquement que chez plusieurs
Lestrémines.

Nous rejetons néanmoins l'opinion de H. Lœæw et adoptons celle de
Schiner, en considérant Anarele comme appartenant aux Bibionides,
mais formant frontière avec les Cécidomyides; nous nous appuyons
pour cela sur le motif suivant : chez les Bibionides, la nervure costale
ou épaississement du bord antérieur ne fait jamais le tour de l'aile et
cesse complètement après sa jonction avec le cubitus ou un peu après
elle; chez les Cécidomyies, au contraire, elle se continue, quoique plus

(255) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 439

faiblement, sur le bord postérieur de l'aile. Or Anarete albipennis offre
sous ce rapport le caractère des Bibionides, ce qu'aucun auteur n’a-
vait constaté jusqu'ici. Toutelois, ici encore, nous ajoutons qu’on ne
pourra en décider définitivement qu'après la découverte et l'examen de
la larve de cet insecte.

La parenté qui relie les Cécidomyies aux Chironomidae est moins
grande. Elle est indiquée par la nervation alaire qui, chez ces derniers,
s’'écarte peu de celle des Cécidomyies, bien qu’elle ne soit pas la
même. La pilosité alaire est souvent semblable. Le prothorax, qui s’a-
vance fréquemment par-dessus la tête sous forme de capuchon, se re-
trouve dans un genre de Cécidomyie, à savoir Hormomyia. Les antennes
des femelles du groupe Chironomus ont des verticilles de soies et divers
appendices, comme c’est le cas pour les Cécidomyies. L'habitude qu'ont
ces mêmes insectes de tenir, au repos, les deux pattes postérieures re-
levées et légèrement recourbées, se trouve aussi chez Choristoneura
sarothamni Kieff., c’est-à-dire chez cette Cécidomyie gallicole qui, à
elle seule, relie les Cécidomyies aux Bibionides dont elle a les antennes.
aux Sciarides dont elle a les éperons, et aux Chironomides comme nous
venons de le dire. Ajoutons encore que la spatule sternale des Cécido-
myies offre une certaine analogie avec le pseudopode unique ou double
des larves des Chironomides. Parmi les genres dont la place est incer-
taine, nous signalons d’abord Limnophyes Eat. J'avais d’abord [294,
p. 133] adopté l'opinion d’Eaton, de P. Lôw et de Bergenstamm, qui
le considéraient comme faisant partie des Cécidomyies et lui assignaient
sa place parmi les Lestrémines ; je crois plus rationnel de le placer
parmi les Chironomides, comme Pa fait Mik. Il en est de même des
genres Psychosphaena, Spaniotoma, Pentaneura et Tetraphora Phil.
que Philippi a classés parmi les Cécidomyies [578]. tandis que Schiner
les place dans les Chironomides.

La distance qui sépare les Cécidomyies des Psychodidae et des
Ptychopteridae est plus grande encore. Les nervures alaires sont nom-
breuses chez ces dernières, et c’est ce qui les éloigne des Cécidomyies ;
mais, d'autre part, leurs antennes moniliformes, ornées de verticilles de
poils, l'absence d’une cellule discoïdale , le petit nombre de nervures
transversales, la pilosité alaire qui est présente encore, quoique res-
treinte au bord et aux nervures sous forme d’écailles, enfin la con-
formation de la nymphe les en rapprochent.

Il ne faut donc pas trop s'étonner si Haliday (Westwood’s Introduc-
tion) a placé parmi les Cécidomrvies les genres Psychoda, Saccopteryx,
Trichomyia et Sycorar,

430 J.-J. KIEFFER. (256)
II. — Affinités des Cécidomyies entre elles.

Nous venons de voir comment la famille des Cécidomyies se rattache
aux autres familles des Diptères. Il nous reste à considérer quelles af-
finités relient ses représentants entre eux, Dans ce but nous expose-
rons les essais de classification qui ont été tentés jusqu’en 1890, puis
nous établirons la division que nous avons adoptée.

Ao Revision critique des genres établis jusqu’en 1890.

CecinomviA Meig. — Ce genre, le plus ancien de tous, a été établi
en 1803 par Meigen dans les termes suivants : « Antennes dirigées en
avant, courbées par en haut, à articles noueux et munis de soies; celles
du mâle composées de 24 articles (*); celles de la femelle, de 12 articles.
Ailes planes et parallèles, traversées par 3 nervures. Tipula piniD.G.»
(475, p. 261]. — Cette diagnose, avec l'indication d’une espèce typique
bien connue, ne permet pas de confondre ce genre avec aucun autre.
Quinze ans plus tard, Meigen, en établissant les genres Lasioptera et
Campylomyza, donna au genre Cecidomyia une extension égalant pres-
que celle de la sous-famille des Cecidomyinae. Tous les diptérologistes
antérieurs à H. Loew, à savoir Latreille, Macquart, Rondani en 1840
et en 1846, et Zetterstedt, suivis plus tard par Walker, ont pris le genre
Cecidomyia dans le sens primitif que lui donna Meigen. Cet exemple
ne fut malheureusement pas suivi en 1850 par H. Loew. Sous le pré-
texte futile et faux (?) que les insectes auxquels s'adaptent la diagnose
de Meigen ne produisent pas de galles et portent par suite une déno-
mination imméritée [402, p. 20], il imposa le nom de Cecidomyia aux
espèces que Rondani et Westwood avaientréunies antérieurement dans
les genres Dasyneura Rond. et Rhabdophaga Westw., et créa le nom
de Diplosis avec la diagnose générique de Cecidomyia Meig. Quelque in-
juste qu'elle fût, la nomenclature de H. Loew fut adoptée par la plupart
des auteurs. En vain, le docteur F. Karsch essaya-t-il de rétablir le
genre Cecidomyia dans le sens primitif de Meigen, et de lui donner
comme synonyme le nom de Diplosis H. Lw. [250], cette louable tenta-
tive échoua, parce que l’on craignait de semer la confusion dans l'étude

(1) Comme d'habitude, Meigen compte seulement les articles du funicule.

(2) En effet, bien des Diplosides forment de véritables galles, par exemple
Cont. tiliarum Kieff., Acodiplosis inulae H. Lw., ete. Ce prétexte, qui n'est
donc pas fondé, est d'autant plus incompréhensible que H. Loew, avait décrit lui-
même, trois ans auparavant et encore une fois en 1850, une Diploside (inulae
H. Ew.) qui forme des galles proprement dites.

(257) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 437

de ces insectes, en renversant une nomenclature universellement adop-
iée (1). Actuellement cet inconvénient n’est plus à craindre; le genre
Cecidomyia Meig. ayant été démembré, on peut laisser ce nom à l'espèce
typique, C. pini D. G., d'autant plus que ce genre ainsi restreint ne com-
prend que quelques espèces.

A la suite du docteur F. Karsch nous considérerons donc dans ce
travail le nom de Diplosis H. Lw. comme un simple synonyme de Ce-
cidomyia Meig.; cela ne nous empêchera pas de conserver au groupe
le nom de Diplosides (Diplosariae).

Oricorropaus Latr. 1805. — « Trompe n'étant point saillante; an-
tennes monililormes, tête transversale. Je rapporte à ce genre la Tipule
des galles du Genévrier de Géer [v. 6, pl XXV, fig. 7, 8). Cet insecte
est brun, les ailes sont ovales, velues, à trois nervures » [351, p. 285-
286]. Bien que cette diagnose soit insuffisante, on maintient avec
raison le genre Oligotrophus, parce que Latreille a donné comme type
un insecte connu.

LaAsioprERA Meig. 4818. — Ce genre est pris universellement dans le
sens restreint que lui donna Meigen (Lasioptera A. Premier article
des tarses court). Il est à remarquer que, sous le nom de Lasioptera,
l’auteur à compris aussi des Lasiopteryr Westw. (Lasioptera B. Pre-
mier article des tarses plus long que le second) et Choristoneura
stygia Meig., en indiquant toutelois que cette dernière espèce devait
probablement former un genre spécial [477, p. 88].

CamPyLoMyzA Meig. 1818. — « Antennes dirigées en avant, de 14 ar-
ticles (©) y compris les deux basaux qui sont plus gros, les autres
courts et cylindriques. Trois ocelles. Aïles velues, à trois nervures.
Premier article des tarses plus long que le 2. » Le dessin alaire repré-
sente la forme ordinaire des ailes des insectes du groupe Campylo-
myza. Les quatre espèces énumérées sont : flavipes, bicolor, atra et
aceris [477, p. 101-102]. |

La diagnose donnée par Meigen s'applique à tout un groupe. Le nom
de Campylomyza doit done rester à un des genres dont se compose ce
groupe.

LESTREMIA Macq. 1826. — « Tête hémisphérique. Antennes de 15 ar-
ticles globuleux et pédicellés chez le mâle, cylindriques chez la femelle.
Pieds longs et grêles. Balanciers à long pédicule. Ailes couchées et

(1) Voir la polémique qui eut lieu à ce sujet entre le docteur Fr. Lüw et le
docteur F. Karsch [253 et 416].

438 J.-J. KIEFFER. (258)

larges; une cellule marginale divisée par une nervure transversale ;

?

quatre postérieures, la 2e pétiolée, non élargie à sa base » [428].

CarocHA Hal. 4833. — « Antennes du mâle de 46 articles globuleux,
distants et velus; celles de la femelle de 10 articles plus courts; les
deux articles basilaires plus gros. Trois ocelles. Chez la femelle, les 4 der-
niers articles des tarses dilatés, ovalaires, dimiguant graduellement. Ailes
velues, semblables à celles de Campylomyza, à l'exception de la ner-
vure marginale courbée en arrière et émettant une nervure fourchue
au bord, et des deux dernières qui ne se réunissent qu'à la base de
l'aile » [200].

En 1840, Rondani proposa la division suivante qui, quelque imparfaite
qu’elle soit, dénote cependant que l’auteur italien avait bien su distin-
guer les genres [603].

IL CecipomYyiNAE (!). Article 1° des tarses très court, ete.

1. Articles des antennes sessiles dans les deux sexes. ....... 2
— Articles des antennes pétiolés chez le mâle. .............. 3
2, Parties buccales allongées et perpendiculaires, larges à leur

base et mucronées à l’extrémité....... OZzirhynchus Rond.
DOUCHE ITÉS COUT SE ses SE PEER Lasioptera Meig.
3. Première nervure aboutissant au bord antérieur avant l’ex-

trémité alaire.s. rent & UT ES RIPEUR ER TÉL RENE 4
— Are nervure aboutissant au bord postérieur de Paile.. ..... à)
4. Antennes de 14-15 articles? G, ou de 11-12? chez la femelle.

SRE SE de cusiste bu odsuts à se tie ddele DDC U RER ERREUR

— Antennes de 1% articles dans les deux sexes. Dasyneura Rond.

>. Antennes de 14 articles dans les deux sexes..............

— Antennes de 20 articles dans les deux sexes. Phytophaga Rond.

— Antennes de 24-26 articles chez le G, de 14-15? chez la 9.
ner es de sat ancre Me ce NAT DENON

(1) Rondani écrit : Cecidominae, Ozirhinchus, Brachineura, Dasineura ;
nous reproduisons ces dénominations en les corrigeant, autant que cela est
possible. On devrait écrire aussi: Oxyrhynchus, mais comme celte dénomi-
nation a été employée déjà antérieurement, il faut conserver le nom défectueux
d'Ozirhynchus.

(259) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 439

I. LESTREMINAE. — Article {er des tarses très allongé, ete.

4. Aïles sans nervure médiane ou avec une nervure médiane

formant une ligne presque invisible. ............... . 2
— Ailes avec une nervure médiane et fourchue. ............ 3
2. Antennes de 10 articles &...:.:......... . Micromyia Rond.
— Antennes.de 15 articles. G. ...#.2.,12225 0 Neurolyqa Rond,
3. Articles des antennes du G longuement pétiolés.........,. 4
— Articles des antennes à peine pétiolés 9 G......... Sciara Meig.
k Fourche’ dilatée & Sa Das A. Zygoneura Meig.
— Fourche à base seu, lee ORSE ARE RARE ME CE ÿ.
o. (OCGeRnuIse 2 CERTA NRA URR Lestremia Mac.
—.Ocelles. SMS LA ARR RTE 6
6:° DEUX ocelles: |. PARC PERS E Mimosciara Rond.
— rois. ogelless/ in fie 2 RUE ER RER. 7
41Earses dessmôles duatés LT NET ER Catocha Hal.
——,VArSeS ON: ANAÉS EL EME EMENRSERER Anarete Hal.

Les nouveaux genres sont établis de la façon suivante :

OziRHyNCHUS. — « Bouche longue, perpendiculaire, large à sa base et
mucronée à son extrémité. Antennes de 12 articles sessiles et arrondis,
à l’exception du 1° qui est conico-cylindrique. Palpes de 4 articles,
dont le 1° petit, les suivants allongés et subégaux. Aïles munies seu-
lement de deux nervures qui sont les postérieures ; moitié basale du
bord antérieur de l'aile épaissie. Type : 0. longicollis Rond. [l. e. p. 16].
D’après la fig. 4 les deux nervures postérieures de l'aile sont simples;
cela concorde avec la diagnose qu'il donne de nouveau en 1846 :
« Seulement 2 nervures qui atteignent le bord postérieur et sont sépa-
rées depuis leur base jusqu’à leur sommet » [604 bis, p. 375]. Ce genre
dont je ne connais pas de représentant, et que H. Loew et Karsch ont
cru être identique à Clinorhyncha H. Lw., doit être maintenu ; il diffère
de Clinorhyncha H. Lw. comme Choristoneura Rbs. de Lasioptera Meig.
Plus tard Rondani proposa de remplacer ce nom par celui d’Acorhyn-
chus [608, p. 287].

BRACHYNEURA. — « Antennes du G de 11-15 (?) articles pétiolés et
en ovale arrondi; celles de la © de 11 articles sessiles et globuleux.

4140 J.-J. KiIEFFER. (260)

Palpes de 3 articles. Seulement 2 nervures#la 4r° atteint le bord anté-
rieur avant l'extrémité de l'aile, la 2e ne se prolonge pas jusqu’au
bord postérieur. Type : fusco-grisea n. sp. » [l. c., p. 17]. Le même
senre à été décrit plus tard par Winnertz sous le nom de Spaniocera.

DASYNEURA. — « Antennes de 14 articles dans les deux sexes, ceux
du mâle pétiolés. Palpes de 4 articles. Trois nervures alaires (ou, si
l'on préfère, deux dont la postérieure est fourchue); la 4° aboutit au
bord antérieur avant l'extrémité de l'aile, les rameaux de la postérieure
prolongés jusqu’au bord. Types : luteo-fusca Rond. et obscura Rond. »
[l. c. p. 17]. Le dessin alaire (1840 et 1846) représente le ecubitus très
distinct du bord et aboutissant à une grande distance de l’extrémité
alaire, ce qui exclut tous les autres genres des Cécidomyines et ne
permet pas de confondre celui-ci avec n'importe quel autre (!). Les
deux types demeureront toujours énigmatiques, mais, en 1860, il
ajouta un insecte connu, D. sisymbrii Schrk.

H. Lœw agit en 1850 envers Rondani comme envers Meigen: il
rejeta le genre Dasyneura, et le considéra comme synonyme de Cecido-
myia H. Lw. non Meig., en alléguant les motifs suivants : Dasyneura
ne serait pas suffisamment distinct de Phytophaga Rond. les deux types
sont méconnaissables, le nom de Dasineura est mal formé, il aurait
fallu écrire Dasyneura; enfin le nom de Dasyneura à été donné en
1841 par Saunders à un autre genre de Diptère.

Aucun de ces prétextes ne peut disculper l’auteur allemand. En
effet, comme le docteur F. Karsch l’a remarqué déjà, si Saunders s’est
servi du nom de Dasyneura en 1841, ce n’est pas une raison pour re-
jeter la dénomination employée par Rondani en 1840. Que les types
soient méconnaissables, on l'accorde, mais la diagnose générique suffit.
Le vice de formation pouvait tout au plus autoriser H. Lœæw à corriger
Dasineura en Dasyneura. Enfin, si en réalité Dasyneura n'était pas
suffisamment distinct de Phytophaga, cela n’autorisait pas à rejeter les
deux dénominations pour recourir à une troisième (?).

Nous conservons donc le genre Dasyneura pour toutes les Cécido-
myines dont le cubitus est éloigné du bord et aboutit en decà de la
pointe alaire, et dont les articles antennaires sont pédicellés chez le
mäle et ne paraissent pas deux fois aussi nombreux que ceux de la

(1) Pas plus pour ce genre que pour les précédents Rondani ne mentionne la
première nervure longitudinale. En 1846, il répare cet oubli.

(2) H. Lœw a fait de même vis-à-vis de Bremi, en confondant deux espèces
bien distinctes, subpatula Bremi et capitigena Bremi, et en choisissant la nou-
velle dénomination Cecid. euphorbiae H. Lw.

à
mondiale

(261) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 441

femelle ; les synonymes seront Cecidomyia H. LWw. pr. p. et Dichelomyia
Rbs.

PayrophAGA.— Sans diagnose générique.Les deux types sont: salicina
D. G. et cerealis Rond., cette dernière espèce décrite plus tard. H. Læw
a fait observer que le nom de Phytophaga avait été employé antérieure-
ment pour désigner d’autres insectes ; il a donc eu raison enle rejetant.

PORRICONDYLA. — « Type : albitarsis Meig. Cette espèce diffère des
autres Cécidomyies non seulement par le nombre des articles, mais encore
par la forme des antennes. Celles-ci sont ossiformes chez le mâle et offrent
au point de jonction d’un article avec le suivant une nodosité subglobu-
leuse, munie d’un sillon annulaire ; celles de la sont allongées, cylindrico-
fusiformes [l. ce. p.14]. La fig. 14 indique la forme ordinaire des articles
du genre Epidosis H. Lw. Point de diagnose générique. En 1846, il
indique que Porricondyla se distingue de tous les autres genres de Ce-
cidomyinae par la présence d’une nervure transversale [60% bés, p.370].
H. Lœæw à rejeté le nom de Porricondyla et l'a remplacé par Epidosis,
sous prétexte que cette dénomination était mal formée, le type mal dé-
terminé (!) et que la nervure transversale existait aussi chez d’autres
genres (?). A l'exemple de M. F. Karsch, nous rangeons done Epidosis
H. Lw. comme synonyme à la suite de Porricondyla Rond. (?), mais
nous maintiendrons la dénomination « Epidosides » (Epidosariae) pour
le groupe.

MicroMYyiA. — « Antennes de 10 articles. dont le 1 est subeylin-
drique, le 2° sphérique et très gros, les suivants globuleux et munis
d’un court pétiole. Palpes de 3 articles, dont le 2 est le plus long et le
3° très petit. Trois nervures longitudinales; la 1e bifide à l’extré-
mité (*), la dernière fourchue; une nervure intermédiaire sous forme
de ligne presque invisible. Trois ocelles disposés en arc. Type : lucorum
Rond. » [2. c. p. 23]. D’après la fig. 14, reproduite de nouveau en 1846,
cet insecte différerait de tous ceux du même groupe par la nervure

(1) C’est inexact; Meigen écrit, il est vrai, que les antennes d'albilarsis se
composent de 12 articles ; mais qu’on y ajoute les deux basaux que Meigen
omet ordinairement et on aura les 14 articles indiqués par Rondani.

(2) C’est vrai, mais elle n'est marquée aussi fortement qu'une nervure longi-
tudinale que dans le groupe des Épidosides et dans les Lestrémines.

(3) Plus tard [404, p. 377] H. Lœw a donné une plus grande extension à
son genre Æpidosis en y comprenant un Camptomyia.

(4) Le rameau inférieur n'est autre chose que la base du cubitus ou nervure
transversale dans le sens de H. Læw.

112 J.-J. KigFFer. (262)

transversale aboutissant à la nervure discoïdale très près de la base de
l'aile, Je ne connais pas de représentant de ce genre.

NEUROLYGA. — « Antennes du mâle de 14 articles globuleux et lon-
cuement pétiolés; celles de la femelle de 12 articles rapprochés et sub-
cylindriques. Palpes de 4 articles subégaux, Trois ocelles en trian-
ele. Trois nervures; les deux premières réunies par une ligne
transversale; la 3° bifurquée. Nervure intermédiaire sous forme de
ligne presque invisible. Types : fenestralis Rond., silvalis Rond. [£. e.,
p. 24] et turmalis Rond. » [{. c., p. 25]. D’après la fig. 23, les articles
des antennes sont tout à fait sessiles chez la femelle. Je ne connais au-
cune espèce de Campylomyza offrant ces caractères et je suis tenté de
croire que l’auteur à décrit le mâle d’un genre (Joannisia?) et une fe-
melle appartenant à un autre genre (Prionellus où Aprionus?).

MimosciARA. — « Antennes du mâle de 16 articles subsphériques et
pétiolés ; celles de la femelle, de 12 articles en ovale cylindrique et
presque sessiles. Palpes de 4 articles, dont le 1° est plus gros et plus
court. Seulement deux ocelles rapprochés des yeux. Nervure intermé-
diaire fourchue, ayant son origine à la nervure transverso-marginale,
Type : molobrina Rond. [. €, p. 25] et lestremina. Les mâles de ce
senre ont je faciès des Lestremia et les femelles celui de Sciara, voilà
pourquoi j’ainommé une espèce lestremina et l’autre molobrina, et pour-
quoi j'ai créé le nom générique de Mimosciara. I est voisin de Catocha
Hal. et de Lestremia Maeq.» [!. c., p. 26]. Nous verrons un peu plus loin,
au genre Furcinerva Rond., ce qu'il faut penser de Mimosciara.

DiouyzA Westw. 1840. — Le nom de Diomyza apparait une première
fois chez Meigen, écrivant de Lasioptera picta Meig. que cet insecte lui
a été envoyé par Megerle sous le nom de Diomyza juniperi [477, p. 89].
Une seconde fois nous trouvons ce nom chez Stephens (1), employé
dans le même sens (Lasioptera A. Meig.), avec les espèces fuliginosa,
rubra et gigantea, mais sans aucune diagnose. Un peu plus tard, en
1840, Westwood [805, p. 126] donne la première diagnose générique
de Diomyza qu'il a pris dans le même sens que Stephens : « Diomyza
Meig. (Lasioptera À. Meig.) 3 espèces. D. fuliginosa Steph. Bord anté-
rieur de l'aile épaissi; une nervure longitudinale et bifurquée; tarses
très longs, l’article basal court; antennes courtes, articles non verti-
cillés. Steph., pl. 42, fig. 4. » En 1851, dans une seconde édition de
louvrage que nous venons de citer (t. 4, p. 70), Meigen nomme Dio-

(1) A Systematik Catalogue of British Insects. London, 1829, p. 240.

(263) Cécidomyides d'Europe et d’Algérre. 143

myza comme synonyme de Lasioplera. Enfin le même nom parait en
1864 chez Schiner, mais dans un sens tout opposé, avec la diagnose
« métatarse plus long que l’article suivant » [659, p. 410]. Il suit de là
que Diomyza Meig., Steph., Westw. est à ajouter comme synonyme à
Lasioptera Meig., et que Diomyza Schin. doit être donné comme syno-
nyme à Lasiopteryx Westw.

Lasiopreryx Westw. 1840. — Ce nom se trouve également d’abord
chez Stephens en 1829 [2. e p. 240] avec la synonymie : Lasioptera B.
Meig. et les espèces obfuscata, pusilla Wiedm., confinis, elegantissima
et inops Steph., mais sans diagnose générique ni spécifique. Westwood
donne en 1840 [{. c.] la diagnose générique suivante : « Lasiopteryx
(Lasioptera B. Meig.) 5 espèces, L. obfuscata Meig. Diffère de Diomyza
par l’article basal des tarses qui est allongé. » Comme il vient d’être
dit, il faut ajouter à ce genre, comme synonyme, Diomyza Schin. nec
Meig., Steph., Westw.

CecibpoGoNA H. Lw. 1844 [399j. — L'auteur ne donne pas de diagnose
générique. D’après la description détaillée de l’insecte, qui est probable-
ment une femelle, nous voyons que la nervation alaire est celle de Les-
tremia leucophaea et que ce genre ne diffère de Lestremia que par
l'absence d’ocelles. Nous admettons que l’auteur s’est trompé sur ce
dernier point, comme cela à eu lieu auparavant pour Macquart, dans
sa description de Lestremia; nous considérerons done Cecidogona
comme synonyme de Lestremia.

FüRGINERVA Rond. (1!) 1846. — Sous cette dénomination, Rondani pro-
pose de réunir les quatre genres Zygoneura Mg., Lestremia Macq., Mi-
mosciara Rond. et Catocha Hal. [604 bis, p. 369 et annotation]. Plus
tard, en 1856, il sépara de nouveau Catocha des trois genres précédents
et réunit ceux-ci dans un genre unique qu'il appela Yposataea [606,
p. 198]. Mümosciara parait en effet ne pas différer de Lestremia, auquel
nous le réunirons comme synonyme, mais les deux autres genres de-
meurent bien différents de Lestremia.

PerrisiA Rond. 1846. — Rondani propose de créer le genre Perrisia
pour la Cécidomyie de lOrtie (wrticae Perr.) « à cause des caractères
des antennes » [604 bis, p. 371, note]. Bien que cette diagnose soit tout
à fait insuffisante, nous maintiendrons Perrisia comme sous-genre de

(1) C’est par erreur que H. Lœw écrit : « Plus {(ard dans une note, Ron-
dani proposa de réunir les quatre genres Zygoneura, Lestremia, Mimo-
sciara et Calocha dans un genre unique, pour lequel il créa le nom de Mo-
lobraea » [402, p. 12].

144 J.-J. Ki£FFER. (264)
Dasyneura, parce que l'auteur à donné comme type un insecte connu.

HereroPezA Winn. 4849 [814]. — « Antennes moniliformes, de 2 + 9
articles pédiculés chez le mâle, et de 2 -- 8 articles sessiles chez la
lemelle; articles basaux épaissis. Bouche très petite. Palpes de 4 ar-
üicles inégaux. Yeux en croissant; point d’ocelles. Article 3° des tarses
très long, le 4° et le 5° très courts. Ailes nues, lancéolées à la base,
arrondies à l’extrémilé, avec deux nervures longitudinales simples. Sp.
Lyp. pygmaea Winn. »

RHABDoPHAGA (1) Westw. 1847. — Westwood a fondé ce genre sur
un insecte qu'il a nommé R. viminalis et qu’on à considéré jusqu'ici
comme identique à saliciperda Duf. I à observé les larves de cette es-
pèce dans les rameaux de Salix viminalis ; parmi elles, quelques-unes
sont sorties des rameaux qu'il avait coupés et rapportés chez lui, et se
sont métamorphosées sur le sol; les autres ont subi leur transforma-
tion dans le rameau. Il n’est cependant pas certain que cet insecte soit
à rapporter à saliciperda, vu que Pierrei et medullaris vivent égale-
ment dans les rameaux des Saules. L'auteur ne donne pas de diagnose
générique, mais une assez longue description de l’insecte, dans laquelle
nous relevons ce caractère générique du genre Rhabdophaga, que le
corps est couvert de poils argentés. Nous ajouterons comme synonymes
à ce genre : Phytophaga Rond. pr. p. 1840 et 1846, Cecidomyia Rond.
1860, Bertieria Kieff.

MoxonicRANA H. Lw. 1850 [402, p. 32]. — Genre fondé sur un in-
secte fossile, trouvé dans l’ambre. « L'insecte matteint que 4,1 mill.,
a des ailes à bords ciliés et à surface non velue, des antennes mo-
niliformes, dont le funicule se compose de huit articles globuleux et
d’un article terminal de forme ovalaire, enfin des tarses de quatre
articles. Il est difficile de décider si cet insecte appartient aux Diptères
ou aux Coccides ; souvent je voulais me prononcer pour celte dernière
hypothèse à cause des grands balanciers qui sont très reculés. Mais,
d'autre part, toutes les parties de son corps rappellent tellement le
genre Heteropeza que je dois le citer aussi sous le nom de Monodicrana
terminalis. »

La même année 1850, H. Lœw établit la division suivante (402,
p. 20-21] :

(1) Westwood a écrit : « Rabdophaga. » Je dois à l'obligeance de M. Car-
pentier, de Dublin, une copie de la description de ce genre.

(265) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 445

A. 2° nervure longitudinale éloignée du bord.

1. Mroisnérvurésr longitudinales. 0:45 APE ER 2
— Quatre nervures longitudinales. ............ Asynapta H. Lw.
2. Thorax s’avançant plus ou moins en capuchon par-dessus

Ja-têtes Ailes. pon:irisées:. 1242420: Hormomyia H. Lw.
— Thorax non prolongé par-dessus la tête. ................. 3
3. Nervure transversale manquant ou médiocrement oblique. 4
— Nervure transversale tellement oblique que la 2° nervure

Darait.avoir deUXTACIRES RER CREER CERN re 6
4. Mâle avec les articles du funicule deux fois aussi nom-

breux que chez lafemelle:: "entr PRE me Diplosis H. Lw.
— Articles du funicule également nombreux dans les deux

SEXES PA, LM SP SIPPMEPERT PRRTENE AR PNR T 5
>. Antennes munies de verticilles de soies... Cecidomyia H. Lw.

— Antennes sans verticilles, mais à pilosité simple et courte...
SARL 1 Le LRU SR TANIA ES PERS Asphondylia H. Lw.

6. Articles du funicule sessiles dans les deux sexes.........
sn res SE cn en NS EUA DRE, FO DER ESS Dirhiza H. Lw.

— Articles du funicule pédiculés dansles deux sexes. ........
268. da ES ONE ESA ANR Et Epidosis H. Lw.

B. 2° nervure longitudinalerapprochée du bord.

4:Parties buccales courtes"297.2200220200n Lasioptera Mcig.

— Parties buccales prolongées en forme de bec dirigé oblique-
ment vers la poitrine. Thorax prolongé en col comme
chez Asynaplt. 2220 Clinorhyncha H. Lw.

Observations sur les nouveaux genres.

HormomyiA H. Lw.— « Les espèces de ce genre se distinguent encore
par leur forme alourdie; une partie d’entre elles ont la tête entière-
ment dépassée par le thorax, et les articles du funicule doubles, p. ex.
fasciata Meig., d’autres ont la tête insérée moins bas et les articles sim-
ples, p. ex. fagi Hart., et on peut les diviser de nouveau d’après l’ab-
sence ou la présence d’un oviducte rétractile (piligera m. — cornuta
Br.) » [402, p. 20]. Le genre Hormomyia H. Lw. n’est pris actuellement
que dans un sens restreint et n’est employé que pour la 1° catégorie
d'insectes indiqués par H. Lœw. — Sous le nom d’Angelinia Ron-

416 J.-J. KiEFFER. (266)

dani à établi plus tard un genre qui esb synonyme de Z/ormomyia
H. Lw. : « Antennes du mâle de 26 à 28 articles alternativement globu-
leux et obovoïdaux; celles de la femelle de 1% à 16 articles égaux,
en ovoide allongé. Ailes comme chez Cecidomyia; horax comme chez
Hormomyia, S'avancant par-dessus la tête » [608].

Diecosis H. Lw. [{. c. p. 20-21]. — « La forme des antennes est très
caractéristique. La femelle à un funicule de 12 articles assez longue-
ment pédiculés et composés chacun d'une partie basale, sphérique, et
d’une partie supérieure cylindrique; lune et Pautre partie munies d’un
verticille de poils. Le funicule du mâle se compose de 24 articles qui
sont alternativement simples et doubles. Dans le cas où les articles
doubles ne se reconnaissent pas à leur forme, ils sont indiqués par la
présence d’un verticille en plus. » Cette diagnose exclut donc les es-
pèces du genre Contarinia. Il est à noter encore que l’auteur ne donne
de diagnose générique que pour les mâles. Comme nous l'avons vu
plus haut, Diplosis H. Lw. n’est qu'un synonyme de Cecidomyia Meig.

AsPHONDYLIA H. Lw. [l.c., p. 21]. — « Articles des antennes cylindri-
ques, avec une pilosité unilorme et courte. Insectes remarquables par
leur oviducte très allongé, rétractile, avec le second article corné et
aciculaire, sans lamelles. » Phyllophaga Rond. et Cylindrocera Lioy sont
synonymes d'Asphondylia.

DiruizA H. Lw.{l. c. p. 21]. — « Ce genre, comme aussi Epidosis, se
distingue par sa nervure transversale qui est tellement oblique qu’elle
paraît être le commencement de la 2° nervure longitudinale, tandis que
le véritable commencement de cette nervure paraît en former comme
une seconde racine; par ceite racine non sinuée, et par les articles
du funicule qui sont sessiles ou presque sessiles, même chez le mâle,
ce genre se distingue d’Epidosis. »

Erivosis H. Lw.[l. €, p. 21]. — « Outre les deux caractères indiqués,
ces espèces se reconnaissent à leurs pattes allongées et grêles, et à la
forte courbure de la 2e nervure longitudinale ; la femelle a un funicule
de 40 à 12 articles allongés, pédiculés et plus ou moins distinctement
doubles; chez le mâle, toujours quelques articles en plus, ceux-ci très
longuement pédiculés, arrondis et à verticilles très longs. » Le nom
d’Epidosis est synonyme de Porricondyla.

AsyxaPrA H.Lw.{l. c., p. 21]. — « Facile à reconnaitre à la dernière
longitudinale bifurquée à partir de sa base. Thorax plus ou moins pro-
longé en col. Comprend des espèces différant beaucoup entre elles :

(267) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 447

celles à thorax prolongé en col ont la nervation alaire d’Epidosis, p. ex.
longicollis m. »

CozronrA Winn.1853 [816, p. 188-189]. — « Base de la seconde ner-
vure deux fois sinuée; nervure transversale longue, oblique, ne sor-
tant pas de la base de la 1'e nervure, mais de cette nervure même, loin
de la base. La femelle à les articles du funicule pédiculés, l’oviducte
court, un peu rétractile et muni de deux lamelles. » D’après le dessin
alaire le eubitus aboutit en-dessous de la pointe de l'aile et la nervure
posticale est simple. Mâle inconnu.

SPANIOCERA Winn. 1853. — Comme nous l'avons vu plus haut, ce
genre est synonyme de Brachyneura Rond.

PayLLopHAGA Rond. 1856. — « Antennes à articles non distinctement
pédiculés, allongés en cylindre. Sp. typ. fusca Meig. » [606, p. 199].
Plus tard, en 1860, Rondani indique lui-même que Phyllophaga est syno-
nyme d'Asphondylia H. Lw. [608, p. 287 et 292].

ANGELINIA Rond. 1860 [608, p. 287 et 293]. — « Antennes du mäle
de 26 à 28 articles, alternativement globuleux et obovoïdaux; celles de
la femelle de 14 à 16 articles égaux, en ovoïde allongé. Aïles comme
chez Cecydomyia (*), thorax comme chez Hormomyia. » Rien ne dis-
tingue ce genre de Hormomyia H. Lw. dont il est synonyme.

Brera Rond. 1860 [/. c., p. 287 et 294].— « Diffère de Diplosis par les
antennes à verticilles composés de poils inégaux, ceux du dessus étant
plus longs que les autres. Sp. typ. decorata Win. Il faut aussi y rap-
porter aphidimyza Rond. » Ce genre est bien distinct; il en est de même
des deux suivants.

ConTariniA Rond. 1860 [{. c., p. 287 et 294]. — « Articles du funi-
cule tous égaux entre eux ; chez le mâle environ deux fois aussi nom-
breux que chez la femelle. Sp. tvp. loti D. G. Il faut encore y ajouter
Cecid. hyperici Gené et Cecid. Woeldickii Contar. » Les deux dernières
espèces ne font nullement partie du même genre que Cont. loti.

WinnerTziA Rond. 1860 [/. c., p. 287 et 293]. — « Les deux der-
nières nervures séparées jusqu’à leur base. La seconde nervure longi-
tudinale n’est pas sinuée ni rapprochée de la première. Sp. typ. lugu-
bris Winn. »

TrirozyGA O. S. 1862 [551, p. 178]. — Ce genre, qui revient à l’'Amé-
rique du Nord, ne diffère de Lestremia que par un seul caractère : en

(1) Ici Rondani prend Cecidomyia dans le sens de Rhabdophaga.

148 J.-J. KIEFFER. (268)
dessous de la nervure discoidale dont le rameau supérieur est fortement
sinué, l'aile n'offre plus qu'une seule nervure, la posticale, qui est
simple. D'après un insecte mutilé, non dénommé, à antennes brisées.

CYLINDROCERA Lioy 1863 [397]. — L'auteur italien crée ce genre
pour les espèces à articles antennaires très rapprochés les uns des
autres et au nombre de douze. Sp. typ. Cecid. ribesii Meig. Ce genre
est donc synonyme d’Asphondylia H. Lw.

Mrasror Mein. 1864. — « Palpes biarticulés, très courts. Tarses de
4 articles. Antennes moniliformes, de 11 articles. Ailes à 3 nervures
simples, dont la médiane m’atteint pas lextrémité alaire. Sp. typ.
metralous Mein. » [481].

OLIGARCES Mein. 1864-1865. — « Trompe et palpes nuls. Tarses de
2 articles. Antennes moniliformes, de 11 articles. Ailes à deux ou trois
nervures simples et plus ou moins évanescentes. Sp. tyYp. paradoæus
Mein. » [481].

PEero Mein. 1869-1870. — « Trompe apparente; palpes de 3 articles
assez longs. Tarses de cinq articles. Antennes moniliformes, avec ver-
licilles. Ailes à trois nervures dont la médiane atteint l'extrémité.
Larve prolifère. Sp. typ. metraloas Mein. » [485].

HapzusiA Karsch 1878. — « Aïles à 3 nervures longitudinales sim-
ples; nervure transversale distincte et oblique, située après le milieu
de la première; 2° longitudinale un peu sinuée derrière la nervure
transversale, courbée par en bas à l'extrémité. Nervures hyalines comme
la surface alaire; bord alaire cilié. Articles du funicule pédiculés. Tarses
de à articles, dont le 1° est petit, de moitié aussi long que le dernier; le
2° très long, aussi long que les 4 suivants réunis; tous d’inégale lon-
gueur. Sp. typ. plumipes Karsch. » Rübsaamen a ajouté à cette dia-
gnose, que les crochets des tarses sont simples [250, p. 334].

CHASToMERA Skuse 1888. — « l'e nervure longitudinale éloignée du
bord; la 2° aboutissant en dessous de la pointe de l'aile; la 3° simple.
Nervure transversale longue, un peu oblique, située à une faible dis-
lance de l'extrémité de la première. Antennes de la femelle à articles
pédicellés et avec verticilles. Sp. typ. bella Sk. » [680]. Ce genre est
probablement synonyme de Haplusia Karsch.

GONIOCLEMA Skuse 1888 [l. c.]. — « Antennes de la femelle de 2 + 11
articles pédicellés, subeylindriques et avec verticilles de poils. 2° ner-
vure longitudinale aboutissant à la pointe de l'aile; nervure transver-
sale distincte; 3° nervure longitudinale simple. Articles 4, 3, 4 et 5
des tarses courts. Sp. typ. paurillula Sk. »

(269) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 449

NECROPHLEBIA Skuse 1888 [!. €.]. — « 2 nervure longitudinale
droite avant la transversale, aboutissant en dessous de la pointe alaire ;
la 3 simple; nervure transversale pas très oblique. Antennes de la
femelle de 2 + 12 articles subeylindriques et pédicellés, munis chacun
de deux verticilles. Sp. typ. volitans SK. »

ScxizomYIA Kieff. 1889 [26%4, p. 183]. — 1°" article des tarses beau-
coup plus court que le 2°. Palpes de 4 articles. Antennes monili-
formes, avec des verticilles de soies; leurs articles également ou à peu
près également nombreux dans les deux sexes (peut-être toujours de
2 + 12 articles). Thorax non fortement convexe. Nervation alaire des
Diplosis. Extrémité abdominale prol ongée sur le dessous, ce qui la fait
paraitre découpée, caractère visible surtout chez la femelle, d’où le
nom de Schizomyia. Sp. typ. galiorum Kielf. ». L’oviducte de la fe-
melle est décrit, trois pages plus loin, comme « aciculaire et dépourvu
de lamelles ».

2° Division de la famille des Cécidomyies.

Schiner [661, p. 5] a divisé les Cécidomyies dans les trois sous-
familles suivantes : 1° Cecidomyinae, comprenant toutes les espèces
dont le premier article des tarses est plus court que le second; 2° Les-
treminae, avec les espèces à métatarse plus long que le second article
et avec plus de trois nervures alaires ; 3° Heteropezinae, ne différant
de la précédente que par la nervation alaire qui se compose seulement
de deux ou trois nervures simples. Cette division ainsi établie a l’in-
convénient de placer dans les Cecidomyinae, des genres tels que Pero,
Frirenia, Leptosyna, qui ne peuvent être séparés des Heteropezinae.
Nous la modifions donc de la façon suivante :

1, Aïles à surface couverte de soies microscopiques et dressées ;
nervures simples, au nombre de 1, de 2 ou de 3; tarses de
2 à » articles, le 4° tantôt plus long, tantôt plus court que
le second. Larves se propageant par pædogenèse....,,..
MN ie de At EEE 1'e sous-famille. HETEROPEZINAE.
— Ailes à surface couverte de poils appliqués, entremêlés par-
fois de soies microscopiques, rarement couverte d’écailles ;
nervures au nombre de 3 à 6, dans le 1° cas la posticale
est ordinairement bifurquée, et la surface alaire est tou-
jours couverte de poils ou d’écailles ; tarses de à articles.
Larves connues ne se propageant pas par pædogénèse,., 2.
2. Premier article des tarses plus court que le second ; ordinai-
Ann. $oc. Ent. Fr., LxIX, 1900. 29

250 J.-J. KiEFFER. (270)

rement trois, rarement quatre nervures. Jamais d'ocelles.
Larves à ouverture anale en fente et située sur le dessous
du dernier segment somatique; verrues spiniformes ven-
trales commencant ordinairementau 2° segment thoracique.
Espèces en majorité gallicoles. 2e sous-famille. CECIDOMYINAE.

Premier article des tarses plus long que le second; 4 à 6
nervures et trois ocelles (à l'exception du genre douteux
Lasiopteryx Westw.). Larve à ouverture anale circulaire
et située à l'extrémité du dernier segment somatique ; ver-
rues spiniformes ventrales ne commencant qu’au troisième
segment thoracique........, 3° sous-famille. LESTREMINAE.

A ne considérer que les larves des Hétéropézines, il paraïitrait plus
rationnel de les placer entre les Cécidomyines et les Lestrémines,. II
en est encore de même si on tient compte de l’oviducte de la femelle,
Mais, comme nous avons vu plus haut que les affinités des Cécidomyies
avec les autres familles des Diptères se reconnaissent surtout à leur
nervation alaire, il faut done aussi, pour les affinités des Cécidomyies
entre elles, tenir surtout compte de leur nervation alaire. En ce cas
la place des Hétéropézines est évidemment en tête de la famille. Nous
trouvons, en effet, chez elles, la nervation alaire la plus faible; tantôt
on n'y remarque qu'une nervure unique et simple (!), tantôt deux
nervures, simples toutes deux, à savoir la sous-costale et la posticale
(pl. 22, fig. 1); tantôt le cubitus apparaît comme troisième nervure;
mais, dans ce cas, la base du cubitus fait toujours défaut, et la nervure
transversale, qui semble être la base du cubitus, s'évanouit avant
d'atteindre la nervure posticale (pl. 22, fig. 2). Brachyneura est l'anneau
qui relie les Hétéropézines aux Cécidomyines ; comme la première, l’aile
est traversée seulement par trois nervures simples (pl. 22 et fig. 3) et
c’est sans doute pour ce motif que H. Læw a écrit en 1864 que le genre
Brachyneura (Spaniocera) est très proche sinon identique à Miastor,
qui est une Hétéropézine. Les ailes, recouvertes d’écailles et non de
soies microscopiques, font rentrer Brachyneura dans la sous-famille
des Cécidomyines; il en est de même de Holoneurus Kieff. et des
genres exotiques Gonioclema Sk., Necrophlebia Sk. et Haplusia Karsch

(1) Cela est le cas pour Sfenoptera Kiefferi Meun. que le docteur F. Meu-
nier vient de découvrir dans le copal fossile de l'Afrique (Nouvelles recher-
ches sur quelques Cecidomyidae et Mycetophilidae de l'ambre et descrip-
tion d'un nouveau genre et d’une nouvelle espèce de Cecidomyidae du
copal de l'Afrique. Ann. Soc. scient. Bruxelles, 1901, V, 25, pl. I-Il):

(274) Cécidomyides d'Europe et d'Algerie. 454

{Chastomera Sk.), qui n’ont également que trois nervures simples,
mais la surface alaire couverte de poils appliqués.

Chez les Cécidomyines, nous trouvons toujours au moins trois ner-
vures, dont la dernière est ordinairement bifurquée (pl. 22, fig. 5); dans
les trois premiers groupes de cette sous-famille, la bifurcation de la ner-
vure posticale se fait vers le milieu (pl. 22, fig. 5), dans les cinq der-
niers genres du quatrième groupe, elle se fait au contraire dès la base,
de sorte que l’aile se compose de quatre nervures (pl. 22, fig. 7); trois
genres du premier groupe, Baldratia, Choristoneura et Ozirhynchus
offrent le même caractère. Enfin, dans le genre Diallactes, qui est le
chainon reliant les Cécidomyines aux Lestrémines, nous remarquons
outre une ramification située entre la costale et la sous-costale, une
nouvelle nervure, la discoïdale (pl. 22, fig. 8); cette nervure qui appa-
rait ici pour la première fois, ne manquera plus dans la sous-famille
suivante, c’est-à-dire dans celle des Lestrémines (!), ni dans aucune
des familles qui suivent celle des Cécidomyies. Remarquons encore
que la base du cubitus ou nervure transversale dans le sens de
H. Lœæw, nulle chez les Hétéropézines, et peu distincte ou nulle dans
les trois premiers groupes des Cécidomyines, paraît dans le quatrième
groupe, celui des Épidosides, aussi bien marquée que les nervures
longitudinales.

Les Lestrémines ont une nervation composée au moins de quatre
nervures (!). Dans le groupe des Campylomyzarine, la discoiïdale est
simple et la posticale se bifurque vers son milieu (pl. 22, fig. 10); dans
le groupe des Sérobliariae (pl. 22, fig. 9), cette dernière se bifurque dès
sa base, de sorte qu'on y trouve cinq nervures; dans le groupe des
Lestremiariae la discoïdale se bifurque à son tour, d'abord faiblement
chez Catocha (pl. 33, fig. 3), puis profondément chez Lestremia (pl. 23,
tig. 1-2), réalisant ainsi la forme que nous retrouvons dans la famille
des Sciarides, des Bibionides, ete. En outre, chez diverses espèces,
apparait une sixième nervure longitudinale située près du bord pos-
térieur (pl. 23, fig. 4).

(1) A l'exception du genre douteux Lasiopteryx Westw., dont je ne con-
nais pas de représentants,

152

Fig.

Fig.

2.

2

7.
8.

1:

1

J.-J. KIiEFFER. (272)

EXPLICATION DES PLANCHES.

PLANCHE 15.

(Les fig. 1-3 agrandies 25 fois, les autres 480 fois, toutes exécutées

à la chambre claire).

Hormomyia Lambertoni Kiel. G.
Clinorhyncha leucanthemi Kieff. ©.
Rhabdophaga clavifex Kieff. ©.
Portion d’aile de Joannisia fungicola Kieff.
— Oligotrophus taxi ({nchb.) Kieff.
— Lestremia leucophaea Meig.
Écaille du bord alaire de Clinorhyncha leucanthemi Kieff.

= = Perrisia veronicae Vall.

PLANCHE 16.

{Toutes les figures agrandies, exécutées à la chambre claire).

Parties buccales de Clinorhyncha tanaceti Kieff. vues de des-
sous ; {, pièce triangulaire inférieure ; Li, lèvre inférieure;
p, palpes ;#, mandibules.

Les mêmes vues de dessus; t, pièce triangulaire supérieure ;
ls, lèvre supérieure (la partie terminale à été enlevée pour
laisser apparaître les autres pièces) ; L, ligule; p, palpes:; mn,
mandibules.

. Tête du même insecte vue de côté; {s, lèvre supérieure; #,

mandibules.

. Parties buccales de Colomyia clavata Kieff.; {s, lèvre supé-

rieure; »#, mandibules; p, palpes.

Deux articles terminaux des antennes d’Asphondylia conglo-
merata D. St. 9 avec les verticilles de filets.

. Verticilles de filets sinueux sur un article du funicule de Schi-

zomyia (Kiefferia) pimpinellae (Fr. Lw.) G.

. Les deux premiers articles du funicule de Bremia urticariae

Kieff. G avec les filets arqués et les verticilles de soies.

(273) Ceéciudomyides d'Europe et d'Algérie. 453
8. Filets arqués d’un article antennaire de Perrisia veronicae
Vall. Q.
9. Deux derniers articles d’une antenne de Polystepha quercus
Kietf. S.
PLANCHE 17.

(Toutes les figures agrandies).
Fig. 4. Article du funicule d’Aprionus Miki Kieff. avec les verticilles
de créneaux.
2. Deux de ces créneaux avec la base de deux soies.
. Deux articles du funicule de Prionellus villosus Kieff. ©.
4. Trois derniers articles de l’antenne de Monardia stirpium
Kieff. G.
>. Un article du funicule de Xylodiplosis praecox (Winn.) G.

6. Deux derniers articles de l’antenne de Bryomyia Bergrothi
Kieff. Ç, vus de dessous.

7. Un des articles du funicule du même insecte, vu de côté.

8. Article du funicule de Catocha muscicola Kieff. ©.

9. Deux premiers articles du funicule de Monardia stirpium.
10. Bremia aphidisuga Rbs. &, selon Rübsaamen.
A1 Wasmanniella aptera Kieff. ©, grossi 25 fois.

12. a d, figures théoriques expliquant la transition d’une lamelle
au filet arqué, selon Ch. Janet.

PLANCHE 18.
(Toutes les figures agrandies).
Fig. 4. Choristoneura sarothamni Kieff. G, grossi 25 fois (camera
lucida).

2. Deux articles basaux et trois premiers articles du funicule du
même.

3. Aile normale et balancier du mâle de Monardia van-der-Wulpi
Meij., selon de Meijere.

4. Métatarse de Choristoneura sarothammni Kieff. avec l’articula-
tion et l’éperon (après l'enlèvement des écailles).

Fig.

15.

[es

J.-J. KIEFFER. (274)

5, Les deux premiers articles du funicule de Contarinia apri-

lina Kieff. (exemple d'articles soudés).

Aile du mâle brachyptère de Monardia van-der-Wulpi Meii.
avec le cubitus sortant du bord antérieur de l'aile (selon de
Meijere).

Anomalie des articles 10-12 du funicule de Clinodiplosis caricis
KiefT.

Deux articles basaux et les deux premiers articles du funi-
cule de Lestodiplosis alternans Kieff. G (nodosités alter-
nativement noires et blanches).

Deux articles basaux etles trois premiers articles du funicule
de la $ du même {articles avec une moitié noire et l’autre
blanche).

. Pince anale de Macrolabis pilosellae (Binn.), vue de dessus.

— Bremia cardui Kieff., vue de dessus.

. Deux premiers articles du funicule de Braueriella phillyreae

(Fr. Lw.) & (exemple d'articles non soudés).

3. Deux premiers articles du funicule de Contarinia (Stictodi-

plosis) corylina (Fr. Lw.) (articles soudés).

. Écaille de l'abdomen de Choristoneura sarothamni Kief.,

grossie 480 fois.

Métatarse de Colomyia appendiculata Kieff., avec l’appendice
terminal.

PLANCHE 19.

(Toutes les figures agrandies).

. Pince de Rhabdophaga pulvini Kieff., vue de côté.

. Pince de Rhabdophaga clavifex Kieff., vue d'en haut; a, la-

melle supérieure (bilobée); ce, lamelle inférieure (double):
d, stylet; e, article basal; /, ongle.

. Pince du même avec la lamelle supérieure (a) repliée, de sorte

que la lamelle intermédiaire et bilobée (b) devient visible.
Pince d’Asphondylia sarothammi H. Lw.
— de Clinorhyncha tanaceti Kielr.

de Perrisia praticola KiefT.

Cécidomyrdes d'Europe et d’Algerie. 155

Pince de Schizomyia galiorum Kiel.
— Clinodiplosis Liebeli KielT. (Schizomyia sociabilis Rbs.)

— Clinodiplosis coriscii Kieff.; a, lamelle supérieure; b,
lamelle intermédiaire; d, stylet.

. Clinodiplosis galliperda (Fr. Lw.); a, lamelle supérieure; b,

lamelle intermédiaire; d, stylet.

. Lestodiplosis septemguttata Kieff.; a, lamelle supérieure; b,

lamelle intermédiaires; 4, stylet; », appendice de Particle
basal, remplaçant la lamelle inférieure des Dasyneur«.

. Extrémité de l’article basal avec l’ongle de la pince de S{eno-

diplosis geniculati O. Reut.

. Pince de Cystiphora taraæaci Kiel.
. Article basal et ongle de la pince de Clinodiplosis caricis Kieff. :

m, appendice de l’article.

PLANCHE 20.

(Toutes les figures agrandies).

. Oviducte de Schizomyia liqustri Rbs.

= Cystiphora taraxaci Kiel.

— Contarinia tritici (Kirb.)

= Dasyneura raphanistri Kieff., pendant la ponte
et vu de dessous.

5. Le même vu de profil.
. Abdomen du même avant ja ponte, et vu de dessus.
. Extrémité de la tarière d’Asphondylia conglomerata D.S.

— l'oviducte d’'Oligotrophus juniperinus (L.).

— de Perrisia ericae-scopariae (Dui.) vue de côté,
avec l'œuf sortant au moment de la ponte.

. Extrémité de l’oviducte de Clinorhyncha leucanthemi Kiel.

vue de profil.
— de Contarinia tritici (Kirb.), vue de dessus.
— de Stefaniella atriplicis Kiefr., vue de côté ; 4,
conduit ou canal interne vu par transparence; b, pochette ;
c, pointe chitineuse.

456 J.-J. KIEFFER. (276)
PLANCHE 21.
(Toutes les figures agrandies).

Fig. 1. Oviducte de Ledomyia lugens KiefT., vu de côté.

1©

— Baldratia salicorniae Kieff., vu de côté.
3. — Myricomyia mediterranea (Fr.Lw.), vu de côté.

4. Extrémité de l'abdomen de Porricondyla microcera KielT. ©
avec lamelle biarticulée, vue de dessous.

5. — Dicrodiplosis fusciata Kieff., vue de côté.

6. — Porricondyla venusta (Winn.), vue de dessus.
7. — Colomyia appendiculata Kieff., vue de côté.

8. — Clinodiplosis longiventris Kieff., vue de côté.
9. — Prionellus villosus Kieff., vue de dessus.

10. Métatarse antérieur de Colpodia anomala KiefT.
11. Oviducte de Dicerura scirpicola Kielf., vu de dessous.
12. — Colpodia anomala Kieff., vu de côté.

PLANCHE 292.

(Toutes les figures agrandies).

Fig. 1. Aile de Heteropeza pyqgmaea Winn., selon Winnertz.

2. — Leptosyna acutipennis Kieff.

3. — Brachyneura squamigera (Winn.)

— Lasioptera rubi Heeg.

5. — Dasyneura (Perrisia).

6. — Asphondylia.

7. — Winnertzia nigripennis Kiel.

8. — Diallactes croceus Kiel.

9. — Strobliella intermedia Kiel.
10. — Prionellus villosus KiefT.

A1. Crochets et empodium de Prionellus pini KiefT.
12. — — Peromyia Leveillei Kiel.

Fig.

Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 457

13. Crochets et empodium de Perrisia veronicae (Vall.); après
l'enlèvement des écailles.

14. — — Harmandia cristata Kiefr.
15. — = Stenodiplosis geniculati Reut.

PLANCHE 93.

(Toutes les figures agrandies).

4. Aile de Lestremia defecta Winn., selon Winnertz.
2. — Lestremia leucophaea Meig. —-

3. — Catocha latipes Hal. —

4 — Lestremia angustipennis Kiefr.

». Empodium en forme de corne de cerf.

6. Dernier article des tarses de Monardia stirpium Kiel.

7. Nymphe de Camptomyia recta Kieff., vue de face.

8. — Holoneurus fulvus Kieff., vue de côté.

9 — Winnertzia nigripennis Kieff., vue de côté.

10. Moitié supérieure de la nymphe d’Asphondylia Trabuti March.,
vue de côté, d’après P. Marchal.

11. — de Hormomyia Rosenhaueri Rbs., vue de
côté, selon Rübsaamen.

12: — de Rhabdophaga salicis Schrk.

13. — de Rhabdophaga dubia Kiefr.

14. Nymphe de Joannisiu intermedia Kieff., vue de face.

15. — d'Aprionus Miki Kieff., vue du dos.

16. Partie supérieure de la nymphe d’Acodiplosis inulae (H. Lw.),
selon Rübsaamen.

27: — de Rhabdophaga saliciperda Du.

PLANCHE 24.

(Toutes les figures agrandies).

Len

. Nymphe de Peromyia Leveillei Kieff., vue de face.
. Partie supérieure de la même, vue de côté.

LC

158

18.

J.-J. KIEFFER. (278)

Masque facial de Ja nymphe d’un Clinodiplosis.

. Stüigmate thoracique de la nymphe d’un Winnerlzia.

Stigmate abdominal de la nymphe d’Aprionus Miki KielT.

Stigmate thoracique de la nymphe de WMonardia stirpium
Kiefr,

Trois derniers segments de la nymphe d’Aprionus Miki KiefT.,
vus de dessus.

Stigmate thoracique de la nymphe de Dasyneura raphanistri
Kieff., vu de côté.

— de Perrisia Broteri Tav., vue de face.

. Trois derniers segments de la nymphe de Xylodiplosis praecor

Winn., vus de dessus.

Deux spinules dorsales de la même.

. Masque facial de la nymphe d’Aprionus monilicornis Kiefr.

. Cornes céphaliques de la nymphe d’Asphondylia rosmarini

KiefT.

. Cornes céphaliques et papilles cervicales de la nymphe de

Oligotrophus Bergenstammi (Wachtl).
— de Rhabdophaga saliciperda (Duï.).

. Base de la gaine antennaire avec une corne céphalique de la

nymphe de Rhabdophaga medullaris Kieff.

. Partie supérieure de la nymphe de Rhabdophaga Pierrei

Kieff., vue du dos.

Masque cervical avec l’arête transversale (a) de la nymphe de
Rhabdophaga Karschi Kiefr.

PLANCHE 25.

(Larves vues de dessus, exe. la fig. 11, et agrandies).

Larve de Monarthropalpus buxi (Lah.).
— Porricondyla (Dicroneurus) venusta (Winn.).
— Rhabdophaga pseudococcus Rs.
— Rhizomyia perplexa Kiel.

— Oligotrophus capreae (Winn.).

(279) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 459

(er)

Tête, cou et 1° segment thoracique de la larve d’'Arthro-
cnodax fagi KiefT.; «, tache oculaire.

7. Tête d’un Lestodiplosis acarivore.

8. Tête, cou et 1° segment thoracique de la larve de Lestodi-
plosis (Coprodiplosis; cryphali Kieff.; a, tache oculaire.

9. Portion du bord latéral d’un segment de la larve de Rhizo-
myia perplexa Kiefr.

10. Larve de Dicerura scirpicola Kieff.
11. Tête et cou de la larve de Contarinia ribis Kieff., vus de
dessous; «a, papilles collaires.

12. Tête de la larve de Braueriella phillyreae (Fr. Lw.).

PLANCHE 26.

(Parties de larves agrandies).

Fig, 1. Tête de la larve de Mycodiplosis Reaumuri Kieff., vue de des-
sus; 4, pièce en fer à cheval; b, pièce arquée reliant la pré-
cédente; c, tige qui rejoint la pièce en fer à cheval ; 4, tige
reliant la première pièce à la seconde; e, tige longitudinale
et médiane ; », sac céphalique.

2. Tête de la même, vue de dessous; f, les deux tiges longitu-
dinales et latérales: g, étuis de l’æsophage.

3. La même vue de côté; h, pièces parallèles et terminées par
un croc; b, ec, d, f et g, comme plus haut.

4. Tête de la larve d’Atrichosema aceris Kieff. qui renfle le pé-
tiole des feuilles d’Acer campestre L., vue de dessous.

5. Tête de la larve de Contarinia tritici Kirb., écrasée et vue
de dessous; f, les deux tiges longitudinales et latérales;
m, extrémité de ces tiges faisant office de crochet, séparées
l’une de l’autre et étalées par l’écrasement; g, étui de l'œ-
sophage.

6. Portion de l’avant-dernier segment somatique de la larve de
Schizomyia nigripes (Fr. Lw.) avec la plaque dorsale, un
des stigmates et la 4'° papille latérale.

7. Segment anal de la larve de Contarinia tritici Kirb. vu de
dessus.

460

40.

©

6.

> |

J.-J. KiEFFER. (280)

. Segment anal de la larve de Xylodiplosis praecox (Winn.), vu

de dessus.

. Segment anal de la larve d’Arthrocnodaæ fagi Kieff., vu

de dessus.

Segment anal de la larve de Dicrodiplosis ranunculi Kiefr., vu
de dessus.

1. Segment anal de la larve de Cecidomyia Giardi Kieff., vu de

dessus.

Segment anal de la larve d'un Lestodiplosis Kieff., vu de
dessus.

. Segment anal de la larve de Clinodiplo sis caricis KiefT., vu

de dessous.

. Palpes tri-articulés d’une larve de Lestrémine.

PLANCHE 27.

(Papilles et segments anaux de larves, agrandis).

. Deux derniers segments de la larve de Schizomyia taxi KiefT.,

vus de dessus.

Deux derniers segments de la larve de Mycodiplosis boleti
Kieff., vus de dessus.

. Deux segments de la larve de Clinodiplosis Sp. n., vus de

dessus.

Segment anal de la larve de Thurauia aquatica Rbs., vu de
dessous.

Segment anal de la larve de Winnertzia striaticollis KiefT.,
vu de dessous.

Segment anal de la larve de Winnertzia levicollis Kieff., vu
de dessous.

. Trois derniers segments de la larve de Bremia abietis KielT.,

vus de dessous.

Segment anal et extrémité du dernier segment abdominal de
la larve de Winnertzia sp. n., vus de dessus.

. Papille stigmatifère de la larve de Cecidomyia pini (D. G.).

= — de Dicrodiplosis longipes
KiefT. ?

(284)

Fig.

Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 461

11. Deux papilles dorsales soudées, de la larve de Cecidomyia pini

(D. G.).

12. Deux papilles dorsales soudées, de Ja larve d’un Lestodiplosis

1©

9

rs]

en)

acarivore.

PLANCHE 28.

(Papilles des larves, agrandies).

. Premier segment thoracique de la larve de Contarinia pirivora

(Ril.) vu de devant et grossi 480 fois; a, papilles sternales;
b, papilles pleurales internes composées de trois; e, papille
pleurale externe; f, une des papilles latérales (papillae late-
renses Kieff.)(1); sp, spatule sternale ; v. sp, verrues spiniformes.

. Larve de Contarinia pirivora (Bil.), vue de dessous et grossie

0 fois; {, tête ; th, thorax ; abd, abdomen ; s. a, segment anal,
ec, papilles ventrales antérieures; 4, papilles ventrales posté-
rieures.

Partie du 2° et du 3° segments thoraciques de Perrisia n.
sp. qui gonfle les fruits de Myosotis palustris L.; a, papilles
sternales ; v. sp, verrues spiniformes ; sp, spatule ; b, papilles
pleurales internes et composées ; e, papille pleurale externe
et simple (grossie 480 fois).

. Portion du 1°° segment thoracique de la larve d’Asphondylia

conglomerata D. St., vue de dessous; 4, papilles sternales ;
b, papilles pleurales internes, simples et avec une soie; e
papille pleurale externe avec soie.

»

Larve de Contarinia pirivora (Bil.), vue de dessus et grossie
30 Îois; st, stigmate ; p.d, papilles dorsales ; s.a, segment
anal.

. Portion du 1° segment thoracique de Stefaniella atriplicis :

sp, Spatule ; a, papilles sternales, composées de deux soies.

PLANCHE 29.

(Papilles des larves agrandies).

1. Portion du 1° segment de la larve de Lasioptera populnea

Wachtl vue de dessous (camera lucida).

(1) [311, p. 188].

10.

J.-J. KiEFFER. (282

Portion du 4° segment thoracique de la larve de Asphondylia
punica March., vue de dessous (camera lucida) ; a, papilles
sternales; b, papilles pleurales; c, partie circulaire tenant
lieu de papille pleurale externe; d, espace chitineux et brun.

Portion du 4° segment thoracique de la larve de Mikiola fagi
(Hart.) ; a, papilles sternales ; b, papilles pleurales.

Portion du 1° segment de la larve d’une Lestrémine; «4, pa-
pilles sternales ; b, papilles pleurales.

Pseudopode d'une larve de Lestodiplosis (camera lucida).

. Stigmate de la larve de Stefaniella atripheis Kiel.,vu de protil.
. Le même vu de face.
. Segment ventral d'une larve de Clinodiplosis cilicrus Kielf.,

vu de côté; a, deux des quatre papilles ventrales anté-
rieures; b, une des deux papilles ventrales postérieures.

. Deux premiers segments thoraciques de la larve d’un Lesto-

diplosis, vus de dessous ; a, pseudopodes ; b, papilles pleu-
rales.

segment ventral d’un Winnertzia; a, quatre papilles ven-
trales antérieures ; b, quatre papilles ventrales postérieures;
e, quatre papilles ellipsoïdales.

PLANCHE 30.

(Appareil respiratoire et appareil digestif agrandis).

1. Larve de Mycodiplosis Reaumuri Kieff.; appareil respiratoire

vu d'en haut; les deux troncs latéro-dorsaux avec leurs
ramifications transversales.

Appareil respiratoire de la même, vu d'en bas; les deux
troncs latéro-ventraux avec leurs ramifications transver-
sales,

. Appareil digestif de la même larve; a, estomac; b, gros jn-

testin; c, intestin grêle; d, tubes de Malpighi; e, glandes
salivaires.

Trois derniers segments somatiques de la larve de Cecidomyia
pini (D. G.), vus de dessus; a, segment anal; b, avant-der-
nier segment somatique recouvrant le segment anal et
portant la dernière paire de stigmates; €, papilles dorsales

(283) Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 463

soudées et renflées ; d, troncs latéro-dorsaux vus par trans-
parence ; st, stigmates.

9. Les trois mêmes segments vus de dessous ; a, segment anal ;
b, avant-dernier segment somatique.
6. Globules contenus dans les glandes salivaires.

7. Stigmate abdominal de la larve de Mycodiplosis boleti Kiefr.
8. Larve de Mycodiplosis Reaumuri Kieff., vue de côté; a, cœur
ou vaisseau dorsal ; b, cerveau; «, système nerveux.

9. Partie des troncs latéro-dorsaux de la même montrant deux
tubes transversaux dont les extrémités renflées en am-
poule sont écartées l’une de l’autre, par anomalie.

10. Portion du vaisseau dorsal d’une larve avec deux valvules;
a, avant la contraction; b, pendant la contraction ; d’après
P. Marchal.

PLANCHE 31.

(Dessins agrandis ; les fig. 1-3 faites à l’aide de la camera lucida).

Fig. 1. Spatule subsessile de la larve immature de Rhabdophaga
Pierrei Kieff., grossie 480 fois; larve extraite d’une branche
de Saliæ aurita L., le 15 septembre. ,
2. La même spatule vue de profil.

3. Spatule de la larve du même insecte, grossie 480 fois; larve
arrivée à maturité, extraite de la branche de Saule le 6 mars,
alors qu’elle avait achevé le travail de perforation et qu’elle
n'était plus séparée du dehors que par l’épiderme de l’é-
corce; 4, papilles sternales, en cône effilé, imitant une soie
obtuse ; b, papilles pleurales: «, pleures avec granulation ;
d, verrues spiniformes.

Æ

. Deux premiers segments thoraciques , et commencement du
3°, d'une Lestrémine; papilles, spatule et protubérances
chitineuses.

©

. Spatule de Mayetiola lanceolatae (Rbs.), d’après Rübsaamen
ainsi que les cinq suivantes.

6. Spatule de Mayetiola sp.? sur Calamagrostis lanceolata, dans
un léger enfoncement sous une des gaines supérieures.

1

. Spatule de Mayetiola bimaculata (Rbs.).

46%

KE

12.

J.-J. KierrEer. (284)

. Spatule de Wayetiola moliniae (Rbs.).
. Spatule de Mayetiola sp.? sur Molinia coerulea Mônch., sous

une des gaines supérieures, fortement renflée.

. Spatule de Mayetiola radicifica (Rbs.).

. Trois derniers segments de la jeune larve d’Arnoldia cer ris

(Koll.), vus de dessus.

. Stigmate abdominal de la même très grossi.
. Appendice thoracique de la jeune larve de Wikiola fagi

(Hart.).

. Un des crochets d’une larve d’Holoneurus fulvus Kieff., vu

de côté.

Papille dorsale changée en appendice squamigère, et deux
lamelles dorsales de la larve de Clinodiplosis caricis Kiel.

. Spatule de la même larve.

PLANCHE 32.

(Toutes les figures agrandies).

1. Spatule de la larve de Schizomyia galiorum Kielff.

— de Schizomyia tami Kiefr.

— de Hormomyia n. sp. (renflement basal des
feuilles de Careæ).

— de Colpodia anomala Kiel.
-— d’Asphondylia pilosa Kiefr.

— de Æormomyia n. Sp. (galles en grains de blé
à la base de Carex Davalliana.)

— d'Oligotrophus Bergenstammi (Wachtl).

— de Braueriella phillyreae (Fr. Lw.).

— de Winnertzia fusca Kieff.

— de Schizomyia (Kiefferia) pimpinellae (Fr.

Lw.).
— de ZZormomyia cornifex Kielf.
Papilles collaires supérieures et pièce cornée du cou de la

larve de Dicrodiplosis longipes Kieff.? (la pièce cornée est
située en dessous et vue par transparence.)

(285)

CS

18.
LE
20.
2:

939
CLEO

Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 46

PLANCHE 33.

(Toutes les figures agrandies).

. Spatule, papilles pleurales et sternales de la larve de Bal-

dratia salicorniae Kiefr.

Spalule, papilles pleurales et sternales, et crochets de Holo-
neurus fulvus Kieff.

Spatule et papilles sternales de Porricondyla albimana
(Meig.); a, crochets.

Spatule, papilles pleurales et sternales de Lasioptera arun-
dinis Schin., selon Rübsaamen.

. Spatule, papilles pleurales et sternales, verrues cingentes et

spiniformes de Wayetiola Joannisi Kieff,

. Idem de Wayetiola dactylidis Kiel.
. Idem de Mayetiola holci Kielf,

. Abdomen de Frirenia tenella Kielf., les œufs vus par trans-

parence.

. Idem d’un Dasyneura. 4

. OEul de Contarinia (Stictodiplosis) anthonoma KiefT.

— Contarinia aprilina Kiel.

— Pseudohormomyit jranifex Kieff.
— Contarinia trilici Kirb.

— Contarinia scabiosae Kiefr,

— d'Oligotrophus Harligi (Lieb.).
— d'Asphondylia serpylli Kieff.

— de Cystiphora taraxaci Kielr.

— d'Asphondylia prunicola Nacht].
— de Winnerlzia nigripennis Kieff.
— Perrisia praticola Kieff.

— Perrisia piri (Bouché).

— Xylodiplosis praecox (Winn.).

Ann. Soc. Ent. Fr., LxIx, 1900. 30

AGG J.-J. Kierrer. (286)

PLANCHE 34.

(Grandeur naturelle).

Fig. 4. Galle de Rhabdophaga rosaria (H. Lw.), sur Salix purpurea L.
2. Galle du même insecte sur Salix aurita L.
3. Galles de Rhabdophaga Karschi Kielf.. sur Salir aurita L.
4. Deux galles de Rhabdophaga rosariella Kiel. — —
», Galles de Rhabdophaga clavifex Kielf., sur Salix Caprea L.
6. Galle de Rhabdophaga dubia Kielf., sur Salix aurila L.

7. Galle de Rhabdophaga pulvini Kielf. (salicina Gir. non
Schrk.).

8. Galle de Rhabdophaga sp.?

9. Section d'une branche dénudée de Salir purpurea L. avec
les loges de Rhabdophaga saliciperda (Duf.).

10. Galles de Rhabdophaga salicis Schrk. sur Salir purpurea L.

Al. Partie d’une branche de Salir aurita L. avec les loges de
Rhabdophaga Pierrei Kiefr.

12. Galle de Rhabdophaga heterobia (H. Lw.), sur Saliæ purpu-
rea L.; a, galle du même insecte sur un chaton du même
Saule.
PLANCHE 99.
(Grandeur naturelle).
Fig. 1. Cécidie de Perrisia plicatrix (U. Lw.) sur Rubus coesius L.,
selon H. Loew, comme les deux suivantes.
2. Une gousse normale de Wedicago falcata L. et deux gousses
déformées par Asphondylia nigripes Kiefr.
3. Galle de Dasyneura sisymbrii (Schrk.) sur Nasturlium sil-
vestre R. Br.
Galle d'Oligolrophus juniperinus (L.) avant la sortie de lPin-
secte, sur Juniperus communis L.:; 4, la même après la sor-
lie de linsecte.

=

5. Galle d'Oligotrophus Panteli Kielf. avant la sortie de lin-
secte, sur Juniperus communis L.; a, la même après la
sortie de l’insecte.

(287)

1

10.

5 LR

ps

(er

1

10.

42e

12.

13.

Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 167

Galle d'Oligotrophus sp.? sur la même plante.

Galle d'Oligolrophus sabinae Kicif., sur Juniperus Sabina L.
Galle d’'Oligotrophus n. sp., sur Ulnus campestris L.

Galle de Perrisia Sp. n., sur Salir aurita L.; a, section.

Galle de Rhopalomyin Kiefferi Trott., sur Artemisia campho-
rala; a, Section.

Galles d’Acodiplosis inulae (H. LW.), sur Inula britanniea L.

PLANCHE 36.
{Grandeur naturelle).

Deux galles de Contarinia globuli (Rbs.), sur Sarothamnus
scoparius L.

Galle d’Asphondylia pilosa Kieff., sur la même plante.

Deux galles d'Asphondylia sarothamni (H. Lw.), sur la même
plante.

Renflements de Sarothamnus scoparius L. produits par
Janetiella tubereuli (Rbs.)

Deux galles de Perrisit tubicola Kieff., sur Sarothamnus
scoparius L.: a, Section d'une galle.

Galle de Contarinia quercicola (Rbs.), sur Quercus cerris L.

Fleurs de Myosotis palustris L. renflées et déformées par
Perrisia n. sp.

Fruit de la même plante gonflé par Perrisia n.sp.
teuflement d'une feuille d'Echinophora spinosa produit par
Lasioptera Sp. n.

Galle de Perrisia ericae-scopariae {Duf.), sur Erica scoparia
L.; a, une des écailles avec la petite galle interne qu'elle
recouvre.

Galles d’Asphondylia Borzi D. St sur Rhamnus alaternus L.

Agglomération de galles d’Asphondylia conglomerata D. St,
sur Atriplex halimus L.; a, section d’une des galles de
l'agglomération.

Section dela galle d'Asphondylia punica March., sur la même
plante,

168 J.-J. KiEFFrER. (288)

PLANCHE 937.

(Grandeur naturelle).

Fig, 4. Galles d'Oligotrophus Bergenstammi Wachtl, sur un rameau
de Pirus selon Wachtl.

2. Galles de Rhopalomyia? sur Genista scorpius DC.; a, section.

3. Rejet de Galeobdolon luteum Huds. avec trois galles de Perri-
sia galeobdolontis (Winn.).

=

Tige de Salicornia herbacea L. avec deux galles de Baldratia
salicorniae KielT.

». Section d'une galle de Stefaniella alriplicis Kieff., sur Atriplex

halimus L.

6. Galle de Perrisiasp.? sur Euphorbia cyparissias, d'après Mik,
ainsi que les deux suivantes.

7. Galle de Perrisia subpatula (Bremi), sur la même plante.
8. Galle de Perrisia capitigena (Bremi), sur la même plante.
9. Galle d'Oligotrophus taxi ({nchb.), sur Taxus baccata L.

PLANCHE 38.

Grandeur naturelle).

Fig. 1-3. Feuille de Quercus cerris L. vue de dessous.
1. Trois galles d'Arnoldia homocera (Fr. LWw.), vues de dessus
et quatre vues de dessous: a, section agrandie.
2, Quatre galles d'Arnotdia cerris (Koll.), vues de dessus el
six vues de dessous: a, section d’une galle agrandie.
3. Trois galles de Dryomyia circinnans (Gir.), vues de dessous ;
a, Six galles vues de dessus.
4-5. Feuille de Quercus cerris L., vue de dessus.
4. Quatre galles de Contarinia subulifer Kicif., vues de dessus ;
a, section d'une galle agrandie.
>. Galles d’une Cécidomyie nouvelle, vues de dessus: a, les
mêmes vues de dessous: b, section d’une galle agrandie,

6-7. Feuille de Quercus ilex L., vue de dessous,

(289)

Fig.

Fig.

6.

11e

pe

pr]

“1

Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 469

Galles de Dryomyia Lichtensteini (Fr. LWw ), vues de dessous;
a, les mêmes vues de dessus.

Galles de Contarinia ilicis Kieff., vues de dessous ; a, section
agrandie.

Galle de Contarinia Sp. n., sur Quercus suber L.

Galles de Dryomyia cocciferae (March.), sur Quercus cocri-
fera L.: les mêmes vues de dessous.

Galle d'Arnoldia n. sp., sur Quercus cerris L. (section).

Feuille de Quercus pedunculata Ehrh. avec trois galles de
Macrodiplosis dryobia (Fr. Lw.).

Feuille du même avec quatre galles de WMacrodiplosis volrens
Kieff.
PLANCHE 39.

(Grandeur naturelle).

Galles de Perrisia trachelii Wachil, sur Campanula rotundi-
folia L.

Galles de Rhopalomyia baccarum (Wachtl), sur Artemisia
scoparia L., selon Wachtl.

Galles de Perrisia bupleuri (Wachül), sur Bupleurum falcatum
L., selon Wachtl.

Cécidies de Rhopalomyia arlemisiae (Bouché), sur Artemisia
campestris L., selon Fr. L5w.

Galle de Perrisia genisticola (F. Lw.), sur Genista tinctoria L.,
selon Fr. Low.

Feuille d’Acer campestre L. avec les cécidies en ocelle d’une
Diploside nouvelle, selon Fr. Low.

Galles de Rhopalomyia tubifex (Bouché), sur Artemisia cam-
pestris L., selon H. Low.

Galles de Monarthropalpus buri (Lab.), sur des feuilles de Bu-
œus sempervirens L., d'après Laboulbène.

PLANCHE 40.
(Grandeur naturelle).

Galles d'Oligotrophus Reaumurianus (Fr. Lw.), sur une feuille
de Tilia grandifolia Ehrh.; a, section d’une galle agrandie,
d'après Fr. Low, comme les fig. 2, 4, 6,8 et 9,

470

Fig.

Lie

pe]

6.

J.-J. KiEFFEr. (290)

Galle de Perrisia asperulae (Fr. LWw.), sur Asperula tinctoria
L.; a, section.

Chaton normal de Corylus avellana L. et chaton déformé par
Contarinia (Stictodiplosis) coryli (Fr. Lw.).

Rameau d'Erica arborea L. avec trois cécidies de Myricomyia
mediterranea (Fr. LWw.).

Fleurs de Tilia grandifolia Ehrh. avec les galles de Contari-
nia tiliarum Kielf., selon Mik.

Feuille de Prunus domestica L. avec deux galles de Putoniella
marsupialis (Fr. Lw.).

Potentilla argentea L. avec des galles de Perrisia potentillae
Wachtl, selon Wachtl; «a, section.

Rameau de Saliæ fragilis L. avec la cécidie de Perrisia ter-
minalis (H. Lw.). '

Erica carnea L. avec une galle de Perrisia ericina (Fr. Lw.).

PLANCHE 41.

(Grandeur naturelle).

Pousse de Daphne cneorum L. déformée par Perrisia daphnes
Kiefr.

Pousse de Genista tincloria L. déformée par Perrisia sp.?

Cécidie de Perrisia genistam volvens Kielf. sur Genista pilosa
L.

Pousse de Cylisus sagilttarius L. déformée par Perrisia sp.?

Galle de Rhopalomyia pltarmicae {Vall.), sur Achillea Ptarmica
L.

Fruit de Betula alba L. gonflé par Oligotrophus belulue
(Winn.); a, fruit normal; selon Fr. Low.

Feuille de Salir caprea L. avec des galles d'Oligotrophus ca-
preae (Winn.), selon Mik ; 4, section agrandie.

Feuille d'Urlica dioica avec des galles de Perrisia urtlicue
Perr-

PLANCHE 42.
(Grandeur naturelle).

Tige de Galium aparine L. avec des galles de Perrisia apa-

rines Kiel,

(291)

6.

=]

Cécidomyides d'Europe et d'Algérie. 471

Déformation de l’inflorescence produite par le même insecte.

Galle de Perrisia galii (H. Lw.) sur l’inflorescence de Gatium
uliginosum L.

Galles du même insecte sur Galium verum L.

Feuilles de Fagus silvatiea L. avec deux galles de Wikiola fagi
(Hart.); ae, dessins schématiques montrant cette galle
à ses différents stades : d, phase d’élongation ; e, phase d’ac-
croissement diamétral, selon Fockeu.

Feuille de Glechoma heteraceum L. avec les galles d’Oligotro-
plus bursarius (Bremi).

Feuille de Fagus silvatica L. avec les galles d'Oligotrophus
annulipes (Hart) — piliger (H. LW.); a-e, différents
stades de développement, d’après Fockeu; /, section longi-
tudinale d’une galle müre et détachée, agrandie,

Feuille de Cornus sanguinea L. avec les galles d'Oligotrophus
corni (Gir.), vue de dessous.

PLANCHE 43.

(Grandeur naturelle).

Galles de Pseudohormomyia granifex Kieff. sur Carex stellu-
lata Good.

Galles de Æormomyia? sur Carex stellulata Good.

Galles de Hormomyia Sp.? sur Carex stricta Good.

Galles de Hormomyia cornifex Kieff. sur Carer palleseens L,

Galle d’une Cécidomyine sur Sweda vermiculata.

Utricules de Carex muricata L. déformées par Perrisia
muricatae (Mad.).

Utricules de Carex acuta Fr. déformées par Perrisia sp. n.

Rameau de Larir decidua Mill. avec un bourgeon normal et
un bourgeon déformé par Perrisia laricis (Fr. Lw.).
Galles de Contarinia n. Sp. Sur Quereus coccifera L.

Galle de Mayetiola poae (Bosc.) sur Poa nemoralis L. ; 41, sec-
tion transversale; f, tige; g, gaine; f, libres ; 1, larve; fi-
gures agrandies, d’après Prillieux.

=
1
16

J.-J. KiEFFER. (292)

PLANCHE 44.

(Grandeur naturelle).

Fig. 4. Galle de Harmandia petioli Kiel. sur Populus tremula L.;
1 a, section d’une galle corticole grossie.
2. Coupe transversale d'une portion de jeune feuille de Fagus
silvatica L. avec le premier stade de la galle de Mikiola fagi
(Hart.), selon Büsgen.
3. Galles de Harmandia globuli Rbs. sur Populus tremula L.,
selon Rübsaamen, ainsi que les trois suivantes.
h. Galles de Harmandia cristata Kiel. (cavernosa Rbs.).
5. Galles de Lasioptera populnea Wachtl.
6. Galles de Harmandia tremulae Winn. (Low Rbs.).
7. Fleur d'Origanum vulgare L. déformée par Asphondylia Hor-
nigi Wachtl, selon Wachtl (lig. grossie).
8. Rameau de Salix nigra L. avec les galles de Rhabdophaga
saliis Schrk., après la sortie des insectes.
9, Trois fleurs d'Arlemisia herba-alba déformées par des larves
de Cécidomyies, d’après Houard.
10. Feuille d'Olivier avec les galles de Perrisia oleae Fr. LW.
11. Feuille d’Epilobium angustifolium L.avec enroulement mar-
oinal produit par Perrisia Kiefferiana Rbs., d'après Rübsaa-
men.
12. Galles d’Asphondylia rosmarini Kiel. sur Rosmarinus offici-
nalis L. ù
13. Galle de Perrisia ignorata Wachll, sur Medicago sativa L.,
d'après Wachtl.

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