MARINE BIOLOGIGAL LABORATORY. Received Accession No. Given by Place, ***Jlo book op Pamphlet is to be pemoved fpom the liab- OPQtoPy tuithout the peranission of the Tpustees. ZOOLOGISCHER JAHRESBERICHT FÜR 1885. HERAUSGEGEBEN VON DER ZOOLOGISCHEN STATION ZU NEAPEL II.ABTHEILÜNG: ARTHROPOD A. MIT REGISTER. REDIGIRT VON D". PAUL MAYER und D". WILH. GIESBRECHT IN NEAPEL. BERLIN VERLAG VON R. FRIEDLÄNDER & SOHN IS ^lle Fechte vorbehalten. Inhalts -Übersicht. Arthropoda. s^^t^ 1. Allgemeines (Ref.: Dr. Paw? ilfayer in Neapel) 1 2. Pantopoda (Ref.: Dr. Paul Mayer) 7 3. Cruatacea (Ref.: Dr. W. Gieshrecht'm'isea.'^el) 8 4. Poecilopoda. Trilobitae (Ref.: Dr. Paul Mayer) 60 5. Protracheata. Tracheata im Allgemeinen (Ref.: Dr. Paul Mayer) 65 6. Arachnidae. A. Anatomie etc. (Ref. : Dr. Paul Mayer) 67 B — D. Biologie, Systematik etc. (Ref. : Dr. Ferd. Karsch in Berlin) 71 7. Myr iopoda. A. Anatomie etc. (Ref.: Dr. Paul Mayer) 11-5 B — D. Biologie, Systematik etc. (Ref.: Jir. Ferd. Karsch) 116 8. Hexapo da. I. Anatomie etc. (Ref. : Dr. Paul Mayer) 125 II. Aptera (Ref.: Y>x. Herrn. Äirae/ss in Tübingen) 164 III. Pseudo-Neuroptera (Ref. : H. J. Kolbe in Berlin) 167 IV. Neuroptera (Ref. : H. J. Kolbe) 184 V. Strepsiptera (Ref.: H. J. Kolbe) 191 VI. Orthoptera (Ref. : Dr. Herrn. Krauss) 191 VII. Thysanoptera (Ref.: Dr. Herrn. Krauss) 203 VIII. Coleoptera (Ref. : Ludw. Ganglbauer in Wien) 204 IX. Hymenoptera (Ref. : Prof. K W. v. Dalla Torre in Innsbruck) . 339 X. Hemiptera (Reff. : Dr. Franz und Paul Low in Wien) 367 XI. Mallophaga (Reff. : Dr. Franz und Paul LUw) 401 XII. Diptera (Ref. : Dr. Ferd. Karsch) 405 XIII. Siphonaptera (Ref.: !>!. Ferd. Karsch) 442 XIV. Lepidoptera (Ref. : Prof. P. O. Chr. Aurivillius in Stockholm) . 442 XV. Allgemeine Insectenkunde. Praktische Entomologie (Ref. : Dr. Ferd. Karsch) 542 Register 560 Die Referate über Polnische Litteratur rühren zum Theile von Herrn Prof. A. Wrzesniowski [A. W.] in Warschau her. Ein * vor einem Titel bedeutet, daß die Arbeit dem Referenten nicht zu- gänglich gewesen ist. Die fetten Zahlen hinter den Titeln verweisen auf die Seiten, wo sich das Referat befindet. Zusätze des Referenten stehen in f 1 . Arthropoda. 1. Allgemeines. (Referent : Dr. PaulMayerin Neapel.) Barfurth , Dietr. , Vergleichend-histochemische Untersuchungen über das Glycogen. in : Arch. Mikr. Anat. 25. Bd. p 259—404 T 15—18. [7] Beck, E. J., s. Lankester. Benham, W. B. S., s. Lankester. Carnoy, J. B., 1. La Biologie cellulaire. Etüde comparee de la cellule dans les deux regnes. Lierre 1884 27J pgg. 141 Figg. [2] , 2. La cytodierese chez les Arthropodes. Etüde comparee du noyau et du protoplasme ä l'etat quiescent et a l'etat cinetique. in: La Cellule Tome 1 p 191 — 440 8 Taf. [2] Carriere, Just., 1. Die Sehorgane der Thiere vergleichend-anatomisch dargestellt. München & Leipzig 205 pgg. 147 Figg. 1 Taf. [2] , 2o [Besprechung der Arbeiten von Viallanes, Ciaccio und Hickson] . in : Biol. Cen- tralbl. 5. Bd. p 589—597. [4, 6] Gilson , G. , Etüde comparee de la Spermatogenese chez les Arthropodes, in: La Cellule, Recueil de Cytologie etc. Tome 1 p 1—188 8 Taf. [7] Gulland, G. L. , Evidence in favour of the View that the Coxal Gland of Limulus and of other Arachnida is a Modified Nephridium. Mit »Note on the Foregoing« by E. R. Lankester. in: Q. Journ. Micr. Sc. (2) Vol. 25 p 511—520. [6] Hickson, Sydney J., 1. The Retina of Insects. in: Nature Vol. 31 p 341—342 Figg. [3] , 2. The Compound Vision and Morphology of the Eye in Insects. ibid. p 433. [3] , 3. The Eye and optic tract of Insects. in: Q. Journ. Micr. Sc. (2) Vol. 25 p 215 — 251 T 15—17. [3] Kingsley, J. S. , 1. The Inter-Relationships of Arthropods, in: Amer. Natural. Vol. 19 p 560 — 567. [Vorläufige Mittheilung zu dem betreffenden Abschnitte von Nr. 2.] , 2. Notes on the Embryology oi Limulus. in: Q. Journ. Micr. Sc. (2) Vol. 25 p 521 — 576 T 37—39. [51 Krukenberg, C. Fr. W. , 1. Über das Vorkommen des Chitins, in : Z. Anzeiger 8. Jahrg. p 412—415. [7] , 2. Grundzüge einer vergleichenden Physiologie der thierischen Gerüstsubstanzen. Heidelberg 85 pgg. [7] Lankester, E. R., 1. Mr. Lowne on the Morphology of Insects' Eyes. in: Nature Vol. 31 p 504. [3] , 2. idem. ibid. p 578. ■ , 3. New Hypothesis as to the Relationship of the Lung-book of Scorpio to the Gill- book of Limulus. in : Q. Journ. Micr. Sc. (2) Vol. 25 p 339—342. [5] , s. Gulland. Lankester, E. Ray, W. B. S. Benham, & E. J. Beck, On the Muscular and Endoskeletal Zool. Jahresljericilt. 1885. II. 1 2 Arthropoda. Systems of Linndus and Scorpio; with some Notes on the Anatomy and Generic Characters of Scorpions. in: Trans. Z. Soc. London Vol. 11 p 311—384 T 72—83. [6] Leydig, Fr., Zelle und Gewebe. Neue Beiträge zur Histologie des Thierkörpers. Bonn 219 pgg. 6Taf. [2] Lowne, B. T., 1. The Compound Vision and Morphology of the Eye in Insects. in : Nature Vol. 31 p 433. [3] , 2. Mr. Lowne on the Morphology of Insects' Eyes. ibid. p 528. [3] Looss , A., Neue Lösungsmittel des Chitins, in: Z. Anzeiger 8. Jahrg. p 333 — 334. [7] Mac Munn, C. A., Krukenberg's Chromatological Speculations. in: Nature Vol. 31 p 217. [7] Romanes, G. J., Mr. Lowne on the Morphology of Insects' Eyes. ibid. p 528. Schäfer, E. A. , Mr. Lowne on the Morphology of Insects' Eyes. ibid. Vol. 32 p 3 u. 4. [3] Carnoy (*) verbreitet sich sehr eingehend über die feinere Structur von Zelle und Kern, wobei ihm als Paradigmata vielfach die Arthropoden, namentlich Hexa- poden, dienen. Carnoy (^) behandelt ausführlich die feineren Vorgänge bei der Kern- und Zell- theilung. Von Crustaceen untersuchte er Malacostraken, außerdem dienten ihm als Objecte Myriopoden, Araclmiden und Insecten. Directe Kern- und Plasma- theilung ist bei den Arthropoden nicht selten, und zwar sowohl in jungen als auch in erwachsenen Geweben (Hoden, Darm, Malp. Gefäße, Fettzellen, Muskeln, Ovarium) . Leydig liefert die Fortsetzung zu seinen histologischen Untersuchungen [vergl. Bericht f. 1S83 II p 2] und behandelt: Crustacea Ganglienzellen (p 6, 26), Eiesennerven (p 169), Muskeln (p 136 ff.); Arachnida Muskeln (p 27, 138 ff.), Nerven (p 169) ; Myriopoda Muskeln (p 140 ff.), Tracheen (p 72), Nerven (pl71); Hexapoda Hautdrüsen von Coleopteren (p 92), Ganglienzellen von Dijtiscus (p 6), Eiesennerven von Saturnia und Coleopteren (p 170 ff.), Nerven- endigungen in Muskeln von Coleopteren (p 199 ff.), Muskeln von Forfcula, Co- leopteren, Dipteren, Aeschna, Hemipteren, Bambus (p 143 ff.). — Betreffs der »Nerven« von Drüsen bleibt Verf. seiner früheren Ansicht treu (p 194). Die Tracheen der Muskeln treten mit ihrem Eohre in die Muskelsubstanz ein, während ihre Peritonealhülle mit dem Sarcolemma verschmilzt (p 147). Wenn sich eiu Muskel direct, d. h. ohne Vermittelung einer Chitinsehne an die Haut ansetzt, so geht (bei Hydrophilus) »die Substanz der Scheiben fein zerschlissen aus« und die so entstandenen Fransen gehen über »in das nach unten sich ebenfalls auffasernde Schwammwerk des Protoplasma« der Epidermiszellen (p 145) [vergl. unten p6 Lankester, Benham & Beck) . Carriere f/) bespricht die Augen der Arthropoden und verweilt besonders bei denen von Scutigera, Peripatus, Limulus, Forßciila, Mtisca, Calopietyx, Lepisma, Gammanis, Hyperia, Phronima^ Astacus, Leptodora. »Die Eesultate meiner eigenen Untersuchungen decken sich in allen wichtigeren Punkten mit denen Grenachers.« Bei Ameisen scheint das Stemm a sich in der Weise zu entwickeln, daß die Zellen der Hypodermis sich in 2 Schichten anordnen, von denen die innere zur Eetina, die äußere zum Glaskörper wird. Die chitinige Linse ist kein Secret der Hypo- dermiszellen, vielmehr wandeln sich diese allmählich in Chitinsubstanz um (was auch bei Krebsen für die Bildung des Panzers zutrifft; p 179 Anm.), sodaß von ihnen nur mehr oder minder beträchtliche Eeste als »Glaskörperzellena übrig- bleiben ; diese werden daher auch besser als »Linsenmatrix« bezeichnet. Das zu- sammengesetzte Auge entwickelt sich bei Bombyx, Hyponomeuta, Poltsies, 1. Allgemeines. 3 Vespa und Ameisen folgendermaßen. Die Einzelaugen der Raupen lösen sich von. der Haut los und bilden sich zu »kleinen pigmentirten Körperchen, dem Gehirne der Imago anliegend,« zurück; gleichzeitig verdickt sich die Hypodermis der Puppe in der Art, daß 5-6 Reihen Kerne über einander zu liegen kommen. Sind die Larven augenlos, so bilden sich in der Hypodermis eine große Menge kleiner Zellen, die zu Gruppen zusammentreten und die Retinulae sowie die Hautpig- mentzellen und die Krystallzellen liefern, während die Zellen zwischen den Gruppen zu Pigmentzellen werden. Vom Hirn wachsen die primären Nerven- fasern, »zu dieser Zeit noch verästelte Zellen oder besser kernhaltige Sprossen«, nach dem jungen Auge hin und setzen sich daran. Bei den Bombyciden liegen dicht unter der Augenkapsel zwischen den Endverzweigungen des Sehnerven Zellen von unbekannter Bedeutung; bei jungen Puppen sind sie viel größer. »Mesenchymatische Elemente scheinen bei den Insecten nicht oder nur indirect (Tracheen) am Aufbau des Auges betheiligt zu sein.« — »Es scheint Nichts gegen die Annahme zu sprechen, daß der sogenannte Glaskörper (die Linsenzellen) des Stemma und die Krystallzellen des Fächerauges mit ihren Producten (der Linse und der Cornea mit den Kegeln) sowie die Retina des einen und die Summe der Retinulae des anderen Auges einander homolog seien.« Die Ansichten aber so- wohl Grenachers wie auch Lankesters über den phylogenetischen Zusammenhang beider Augenformen sind nicht richtig. Man muß unterscheiden Augen ohne und Augen mit lichtbrechenden Körpern, und unter letzteren wieder einschichtige und zweischichtige. Die zweischichtigen bilden je nach der Embryonalanlage 2 Gruppen : sie entsteht als linsenförmige Verdickung der Hypodermis — Napf- auge oder Stemma — oder sie wird von zwei concentrischen Flächen begrenzt — Facetten- oder Fächerauge. Mithin sind Letzteres und das Napfauge »Organe, welche sich zwar aus gleichen Bestandtheilen in ähnlicher Weise anlegen, in ihrer weiteren Entwicklung aber nach 2 entgegengesetzten Richtungen auseinander gehen.« Eine besondere Gruppe bildet das Auge von Scutigera. — Die gekrümmten Krystallkegel in den Augen der Phronimiden scheinen eine bedeutende Vergröße- rung des Sehfeldes zur Folge zu haben, wobei zwar kein scharfes Bild gesehen, aber die Orientirung im Räume und die Wahrnehmung von Bewegungen erleich- tert wird. Letzteres »ist wohl bei allen Arthropoden die hauptsächlichste Leistung des Sehorganes«; das Fächerauge ist gering an Sehschärfe, aber es hat von einem leuchtenden Punkte den Eindruck einer Fläche, deren Helligkeit nach dem Rande zu abnimmt. — Das Auge von Peripatus ist durch eigenthümliche Stäbchen aus- gezeichnet, welche aus einem stark lichtbrechenden Rohre als Achse und einem körnigen polyedrischen Mantel bestehen. Die Mittelaugen von Lirmdus machen »den Eindruck eines in Rückbildung begriffenen Organes«. Gegen Lowne's Ansichten vom Baue des Auges [vergl. Bericht f. 1884 H p 1] wendet sich Hickson (^), indem er unter specieller Berücksichtigung von Squilla betont, daß die Retinula die Nervenendigung darstellt. Die Lowneschen Bacilli sind keine Stäbchen, sondern ein feines Netz von Nervenfasern, und stehen an beiden Enden mit Nerven in Verbindung; sie fehlen manchen Insecten und allen Crustaceen, sie haben keinen Sehpurpur und sehr oft überhaupt kein Pigment ; aus allen diesen Gründen können sie nicht eine wahre Retina sein. Lowne '') hält seine Theorie indessen aufrecht und Hickson (^) seinen Angriff auf sie. Lan- kester (^) erklärt die Präparate des Letzteren für beweisend, die des Ersteren hingegen nicht. Lowne ("-) hält seinerseits nicht viel von der Paraffinmethode, welche L. rühme. Auch Schäfer fällt kein günstiges ürtheil über Lownes Präparate. Der Rest der ganzen Debatte ist persönlicher Natur. In ausführlicherer Weise begründet Hickson [^) seine Einwände gegen Lowne und weist auch Carriere [vergl. Berichtf. 1&&4 IIp 3] einige Unrichtigkeiten nach. 1* Arthropoda. Methode. Er setzt den Kopf von Musca vomitoria, nachdem er den Hinterkopf abgeschnitten, 40 Minuten lang den Dämpfen von l%iger Osmiumsäure aus, bringt ihn dann in Alcohol, färbt und schneidet mit Caldwells Mikrotom. In- sectenköpfe mit härteren Wandungen schneidet er auf Jungs Mikrotom bei Längs- stellung des Messers. Zur Entfernung des natürlichen Pigments klebt er die Schnitte mit Mayers Albumin auf und legt den Objectträger über ein Gefäß mit 907oigem Alcohol und etwas starker Salpetersäure, sodaß die Dämpfe von Unter- salpetersäure wirken; nachher färbt er. Zum Zerzupfen werden die Augen 24 Stunden in SO/oige Chloralhydratlösung gelegt; nach Fixirung mit Albumin können sie noch gebleicht werden. Verf. empfiehlt besonders Mitchells Häma- toxylin und bereitet es wie folgt. 56 g Campecheholzextract werden fein pulve- risirt, auf einem Filter mit 1 Y2 Liter Wasser ausgelaugt, getrocknet und dann 3-4 Tage in der Wärme mit »Alaunlösung« (25 g pulv. Alaun, 250 g Wasser, dazu soviel Ätzkali , bis ein bleibender Niederschlag entsteht) behandelt; die Flüssigkeit wird filtrirt und mit 10 kern Glycerin und 100 kern 900/oigen Alcohols gemischt, aber erst nach einigen Wochen benutzt, da sie mit dem Alter besser wird. Kesultate. Bei Musca vomitoria enthalten die 4 Pseudocone im Leben eine wässerige oder leicht albuminoide Flüssigkeit und stellen keine Oellinse dar (gegen Lowne) ; es sind nur 6 Retinulae vorhanden ; im Übrigen ist Grenacher's Beschreibung richtig ; Carriere's chitiniges Rohr ist wahrscheinlich eine Trachee. — Zur »Retina« rechnet Verf. von außen nach innen : die Retinulae, das Periopti- con (Molecularschicht Bergers, Retina Lownes, Augenscheibe Weismanns), das Epiopticon und das Opticon nebst den diese einzelnen ganglionären Anschwel- lungen verbindenden Zügen von Nervenfasern. Jedes Ganglion besteht aus einer feinkörnigen Grundsubstanz mit einem feinen Netzwerk von Fibrillen, dem »Neu- rospongium«, darin; umgeben sind die Ganglien und auch das Hirnganglion mit j^einer Scheide von sehr dicht gehäuften Nervenzellen, der Punktsnbstanz Ley- digs«. [Dies Mißverständnis wird auch von Carriere i^) erwähnt.] Zwischen Opticon und Epiopticon sowie zwischen diesem und dem Periopticon bilden die Fasern ein Chiasma. Das Periopticon besteht bei Musca aus neben einander aufgestellten Cylindern von Neurospongium, deren Anzahl zu derjenigen der Retinulae keine bestimmte Beziehung zu haben scheint; die Cylinder werden dadurch gebildet, daß jede vom Epiopticon kommende Nervenfaser sich in 2-3 Fibrillen theilt und diese wiederum sich zu dem Netzwerk gestalten. Benachbarte Cylinder stehen mit einander durch feine Fibrillen oder durch Nervenzellen in Verbindung. Aus dem Periopticon treten Fibrillen aus und »gehen mit den zahlreichen Nervenzellen in dieser Region sofort eine complicirte Anastomose ein, die ihrerseits die Fi- brillen liefert, welche durch die Basilarmembran zu den Retinulae treten.« In dieser »Terminalanastomose« befinden sich namentlich bei Eristalis viele Tracheen mit Spiralfaden ; sie versorgen die cylindrischen Ti-acheenblasen ohne Spiralfadeu zwischen den Retinulae mit Luft. Bei anderen Insecten können Tracheen mit Spiralfaden hier fehlen, jedenfalls aber sind solche mit glatten Wänden stets vor- handen. Bei Periplaneta fehlt das Periopticon, auch kreuzen sich die aus dem Epiopticon austretenden Fasern nur zum Theile (s. unten). Ähnlich bei Nepa. Bei Agrion fehlt das Chiasma zwischen Opticon und Epiopticon ; die Terminal- anastomose ist sehr umfangreich und zerfällt in 4 deutlich geschiedene Regionen. Dies gilt auch für Noctua, Sphinx und Acherontia, wo sie überdies stark pigmentirt ist. Bei Vespa und Apis hat der ganze Tractus opticus keine Tracheen mit Spi- ralfaden. Bei Aesc/ma sind alle Cylinder des Periopticon zu einer Masse von Neu- rospongium verschmolzen. Dies ist auch bei Eristalis und Bomhyx der Fall. Auch bei Crustaceen [Carcinus ^io,., Squilla) ist das Periopticon einheitlich und lassen sich die 4 Regionen der Terminalanastomose nachweisen. Bei einer jungen 1. Allgemeines. 5 Jpis kreuzen sich die Fasern zwischen Epi- und Periopticon noch nicht ; letzteres ist eigentlich nur angedeutet, da die Massen von Neurospongium erst später ent- stehen ; auch bei jungen Periplaneta verlaufen die Fasern vom Epiopticon zu den Retinulae noch ohne Kreuzung. — Von histologischen Elementen lassen sich im Tractus opticus unterscheiden: »nerve-fibrils and fibrillae, neurospongium, nerve- cells, and occasionally ganglion-cells.« Die nerve-fibrils sind nackte Achsen- cylinder, anastomosiren gerne mit einander und zerfallen in noch feinere Fi- brillen, deren Anastomosen das Neurospongium bilden. Letzteres ist um so gröber, je jünger das Thier ist. Die Nervenzellen haben viel weniger Plasma als die Ganglienzellen (die bei Periplaneta a-, bi- und tripolar sind), erscheinen darum oft nur als Kerne und bilden um die Ganglien eine Art Scheide (s. oben) . — Carriere (^) hat bei einer Untersuchung an Musca nach der Methode von Hickson Eesultate erhalten, die sowohl von den oben mitgetheilten, als auch von den frü- heren C.'s in Einzelheiten abweichen. Vergl. Original. Lankester (3) ersetzt seine »overstrained« Hypothese von der Umwandlung der Kiemen von Lmmlus in die Lungen von Scorpio [vergl. Bericht f. 1881 II p 6] durch eine einfachere und hält auch die von Mac Leod geäußerte [vergl. Bericht f. 1884 II p 75] für ungenügend. Die Kieme wird zur Lunge, indem sie sowohl im Ganzen wie in den einzelnen Blättchen sich um- und einstülpt, wobei also in Contact mit Luft bleibt, was vorher bereits mit ihr darin war [während nach der früheren Hypothese die Kiemen austrockneten und sich mit Luft füllten] . Ein mechanischer Grund für die ersten Schritte zu dieser Einstülpung bei den Scor- pioniden liegt vielleicht in dem beträchtlichen Drucke der »ovarian tunic upon the surface of the growing embryo«. Kingsley (^) bespricht in eingehender Weise die Stellung von Limuhs und den Arachniden zu den übrigen Arthropoden. Er theilt diese in 3 Gruppen: Cru- stacea, Acerata (L. und Arachniden) , Insecta (Hexapoden und Myriopoden). Der gemeinsame Vorfahr besaß »flattened ambulatory appendages«, von denen einige aber auch zur Nahrungsaufnahme dienten. Am Kopfe waren dorsal Sehwerk- zeuge verstreut. Die meisten oder vielleicht alle Metameren hatten Segmental- organe, die auch die Ausführung der Genitalproducte besorgten. Das Nerven- system war wie bei Peripatus angeordnet ; der Darmcanal durchsetzte den ganzen Körper ; die Circulation wurde wohl durch Pulsation der dorsalen Darmfasermus- culatur besorgt, wobei das Cölom das Blut enthielt ; die Genitalien lagen wahr- scheinlich ventral. — Von dem Stamme nun zweigten sich zuerst die Hexapoden ab, zu einer Epoche, als »the first pair of originally post-oral appendages were moving towards a pre-oral position« ; später erst trennten sich die Acerata und Crustacea von einander. Die Myriopoden und Peripahis haben vielleicht gar keine «connection« mit den Hexapoden. Verf. gelangt zu diesen Resultaten auf Grund einer Erörterung der Homologie der Gliedmaßen, wobei er die Antennen der Hexapoden, weil präoral, als sui generis betrachtet, darauf ihre Mandibeln dem 1 . Antennenpaare der Crustaceen und den Kieferfühlern der Arachniden gleich- setzt u. s. w. Auf diese Weise würde auch die Mündungsstelle der Coxaldrüse von Limuliis mit derjenigen der Schalendrttse der Crustaceen in Übereinstimmung gebracht werden. Ob die Malpighischen Gefäße, die Verf. nicht als Segmental- organe ansieht, Neuerwerbungen sind oder schon dem Urarthropoden eigen waren, läßt sich nicht entscheiden ; in Folge eines falsch verstandenen Passus von Nebeski [vergl. Bericht f. 1880 II p 52] betrachtet Verf. auch die Harndrüsen der Amphi- poden als Malpighische Gefäße. Die Tracheen der Insecten sind wahrscheinlich unabhängig von denen der Arachniden entstanden. Verf. erinnert hier an die Lufträume bei den Oniscjden und läßt unter Berufung auf Leydig in ihnen die Luft circuliren [was Leydig aber bestreitet] . Die Zweiästigkeit der Gliedmaßen ; Arthropoda. bei Crustaceen und Poecilopoden ist wohl secundär erworben. Das Rückenscliild der Decapoden bestehe, wie schon Dana 1852 richtig angegeben habe, aus den verschmolzenen Tergiten des 2. Antennen- und des Mandibularsegmentes. — Pattens Ansicht von der Natur des Dotters [vergl. Bericht f. 1S84 II p 160] hält Verf. für unrichtig und Kenneils Deutungen der Embryonalhüllen [ibid. p 5] »seem poorly founded.« In der Abhandlung von Lankester, Benham & Beck beschreibt zunächst Ben- ham sehr eingehend Skelet und Musculatur von Limulus, und Beck thut dasselbe für Scotyio und Buthus ; hierauf vergleicht Lankester die Resultate und liefert außerdem Notizen über Bau und Systematik der Scorpione. Nach ihm hatte der gemeinsame Vorfahr der Poecilopoden und Arachniden 18 Segmente mit je 1 Beinpaare ; ein Entoskelet fehlte ihm wahrscheinlich noch ; die Musculatur war sehr einfach und für alle Segmente dieselbe, was sich erst dann änderte, als ein- zelne Segmente mit einander verschmolzen und andere ihre Extremitäten ein- büßten. Bei Limulus sind die schräg von vorn und oben nach hinten und unten verlaufenden Muskeln, die also nicht innerhalb Eines Segmentes ihren Ausgangs- und Endpunkt haben, als Neuerwerbungen zu betrachten und wohl in der Weise zu Stande gekommen, daß Bindegewebe durch Muskelsubstanz ersetzt wurde (p 364). Die großen Endapophysen im Cephalothorax gehören eigentlich zum 1 . Segmente des Abdomens und ebenso haben die 5 folgenden ursprünglich dem je nächsten Segmente angehört. Das Entoskelet ist sowohl bei L. wie bei den Scorpionen nichts als ein nach innen gewanderter Theil des Unterhautbindegewebes der ventralen Körperfläche und die sich daran ansetzenden Muskeln inserirten einst an den Sterniten der betreffenden Segmente. Überhaupt setzen sich bei allen Arthropoden die Muskeln nirgend direct an die Epidermis, sondern stets an das Bindegewebe an (p 366). Das Entoskelet im Cephalothorax ent- spricht nach der Insertion der Muskeln bei L. den Segmenten 1-6, bei S. dagegen 2-7. — Die pericardio- ventralen Muskeln der Scorpione sind hohl, bilden aber, wie Injectionen an Androctonus beweisen, keinen Weg für das Blut von den ve- nösen Lungeusäcken zum Herzbeutel. (Bei L. sind die »similar« Muskeln, die »brides transparentes« von A. Milne Edwards, solid.) Vielmehr verlaufen die betreffenden Venen lateral ganz oberflächlich, zwischen der Haut und der Längs- musculatur. Parallel mit ihnen , aber tiefer verlaufen ebenfalls Venen , jedoch ohne Verbindung mit dem Pericardium. Die Lacunen zwischen den Organen Laben eigene Wandungen, sind also als Venen zu betrachten. Die genannten Muskeln sind aber insofern von großer Bedeutung für die Circulation, als sie wahrscheinlich die Lungensäcke ausdehnen und so den Eintritt des Blutes in sie bewerkstelligen. — Die Arachniden zerfallen in die D elobranchia [Limulus und Eurypterinen) und Embolobranchia (Arachnidae autt.). Bei der Classi- fication der Genera der Scorpioniden ist auch die Lage der Bauchganglien zu berücksichtigen, welche bei den Telegoninen und Scorpioninen mehr nach vorne gertickt sind, als bei den übrigen Familien. Die Innervirung der Lungenbücher variirt aber auch bei Individuen derselben Species. Gulland fand durch Keconstruction von Schnitten durch einen jungen Limulus, daß die Coxaldrtise von ihrer Mündung an der Basis des 5. Beines aus nach innen zunächst mit Ectoderm ausgekleidet ist, darauf als einfaches Rohr mit Plasma- belag und Kernen, aber ohne Zellgrenzen, nach vorn bis etwa zur Höhe des 2 . Beines verläuft und nun mit scharfer Biegung wieder ebenso weit nach hinten zieht, hierbei aber mehrere verzweigte Seitenrohre abgibt. Einige unter den ihr dicht anliegenden von Bindegewebe begrenzten Lacunen enthalten Blutkörperchen, sind also wohl als Bluträume zu betrachten. Am inn^-en Ende des Drüsenrohres hört das Epithel auf und steht das Lumen des Rohres mit »den Räumen im Binde- 2. Pantopoda. 7 gewebe, welche zwischen der Drüse und dem ventralen Blutsinus liegen, in freier Verbindung.« Lankester nimmt diese Räume und ebenso auch die Endsäckchen an der Antennendrüse der Crnstaceen als Theile der Leibeshöhle in Anspruch, die nicht zur Drüse selbst gehören, erklärt die «antennary coxal gland« der Crn- staceen ebenso wie die Coxaldrüse von L. für Nephridien [vergl. Claus, Zoologie 4. Aufl. p 513], als welche auch die Ausführgänge der Genitalien zu gelten haben, und hat sich davon überzeugt, daß bei den »larger Arthropods the blood-system is altogether distinct from the general System of lacunae of the connective tissue.« Barfurth fand im Darmepithel von Spinnen (und mit B. Kirch) in der grünen Drüse von Astacus Glycogen vor. B. Kirch fand es auch in Leber und Muskeln von A. nach Fütterung mit Fibrin. Krukenberg (2) gibt eine Darstellung unserer Kenntnisse vom chemischen Bau des Chitins und der Seide. Nach Krukenberg (^) enthalten bei den Lepadiden die Scuta und Terga kein Chitin, sondern außer Kalk nur einen Eiweißstoff; bei den Balaniden ist dagegen ihre organische Substanz Chitin. Mac Munn verwahrt sich gegen einige Angaben Krukenbergs über ihn [vergl. Bericht f. 1884 II p 5]. K. habe ihn zum Theil falsch verstanden. LOOSS empfiehlt unterchlorigsaures Kalium resp. Natrium in verdünnter wässe- riger Lösung, da es das Chitin sowohl bleiche als auch für Färbemittel durch- lässiger mache, ohne die übrigen Gewebe histologisch zu schädigen. Der bisher erschienene Theil der Arbeit von Giison behandelt die Spermato- genese bei Myriopoden, Arachniden, Hexapoden und Arthrostraken , jedoch vielfach ohne Berücksichtigung der einschlägigen Literatur. Eingehendes Referat nach VoUendune: des Werkes. 2, Pantopoda. (Referent: Dr. Paul Mayer in Neapel.) Carus, J. V. , Prodromus Faunae Mediterraneae sive descriptio animalium maris mediterranei incolarum etc. Pars II Arthropoda p 283 — 524. [7] Hansen, H. J. , Fortegnelse over de hidtil i de Danske Have fundne Pyenogonider eller Söspindler. in: Nat. Tidsskrift (3) 14. Bd. p 647—652. [7] Haswell, W. A., On the Pycnogonida of the Australian Coast, with Descriptions of new Spe- cies. in : Proc. Linn. Soc. N-S-Wales Vol. 9 p 1021—1034 T 54—57. [8] Henderson , J. R. , Recent Additions to the Invertebrate Fauna of the Firth of Forth, in : Proc. Physic. Soc. Edinburgh Vol. 8 p 307—313. [8] Wagner, Nie, Die Wirbellosen des Weißen Meeres. Leipzig, Engelmann, 171 pgg. 21 Taf. Figg. [7] In Wagner findet sich ein Wiederabdruck der Jarschinskischen Cataloge der Pantopoden (und Crustaceen) aus dem Weißen Meere. Sparre-Schneider (Titel s. unten p 14) verzeichnet von Txom^o Pycnogonum liiorale Ström, Pallene spiw'pes Kv. , discoidea Kr., Nymphon mixhmi Kr . — Nach Hansen sind aus den Dänischen Gewässern bekannt Nymphon gracile Leach, mix- tum Kr., Pallene hr evir ostris iokn^t., Phoxichilidhim femoratiim Kr. [P. maxillare Stimps. wohl nur = kleine Ex. won. fem.) , petiolatum Kr., Pycnogonum litorale Str. — Im Limfjord nach Collin [Titel s. unten p 9] Nymphon gracile Leach. Carus gibt lateinische Diagnosen der im Mittelmeer vorkommenden Panto- § Arthropoda. poden, und zwar theils wörtlich den früheren Autoren entlehnte, theils eigene. Er unterscheidet folgende Familien: Ammotheidae Dohrn (Colossendeidae Hoek p. p.), Nymphonidae Hoek (Dohrn p. p.), Pallenidae Hoek (Nymph u. Phoxich. Dohrn p. p.), Phoxichilidae Hoek (Pycnog. u. Phox. Dohrn p. p.j. Auf Jersey u. Sark Pycnogomim litorale Ström und Ammothea longipes Hodge nach Köhler [Titel s. unten p 12]. Henderson kennt vom Firth of Forth 3 Nym- phon und 2 unbestimmte Pantopoden. — In der Mündung der Seine Pycnogomim litorale Ström u. Nyinphon gracüe Leach nach Gadeau de Kerville (2) [Titel s. unten p 10]. Haswell gibt eine Liste der 10 bekannten Australischen Arten und beschreibt selbst 8 neue Arten. Nene Gattangen and Arten. Ammothea assiniiUs n. und longicollis n. Port Jackson; Haswell p 975 Figg. und 977 Fig. Colossendeis tenuissima n. 1 Ex. Port Denison ; Haswell p 978 Figg. Nymphon aequidigitatum n. Port Jackson, xmdi validum. n. Port Stephens; Haswell p 973 Figg. und 971 Figg. Nymp/iopsis n. g. armati/s n. 1 Ex. Port Molle, 15 Faden; Haswell p 974 Figg. Pallene pachycheira n. Port Jackson; Haswell p 979 Figg. Phoxichilidium tuhiferum n. Port Jackson; Haswell p 981 Figg. 3. Crustacea. (Referent: Dr. Wilh. Gie abrecht in Neapel.) Aurivillius, Caxl W. S., Krustaceer hos Arktiska Tunikater. in: Vega Expedit. Vetensk. Jaktt. Vol. 4 p 223—254 T 7—9. [19, 32, 35, 36, 38, 52] Balbiani, E. G., Sur un infusoire parasite du sang de l'Aselle aquatique [Anoplophrya circu- lans). in : Recueil Z. Suisse Tome 2 p 277—303 TU. [30] Beddard , Frank Evers, 1. Report on the Isopoda coUected by H. M. S. Challenger during the years 1873—1876. Part 1 the genus Serolis. in: Rep. Chall. Vol. 11 Part 33 1884 85 pgg. 10 Taf. [30, 32, 55] , 2. Note on the distribution of the genus Serolis and its occurrence on the shores of New Zealand. in: N-Zealand Journ. Sc. Vol. 2 p 388—391. [32] Beneden, Ed. v., Sur la presence ä Liege du Niphargus puteaniis Seh. in : Bull. Acad. Belg. (3) Tome 8 1884 p 650—652. 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[33, 39, 40] Simon, Eugene, Etüde sur les crustaces terrestres et fluviatiles recueillis en Tunisie en 1883 — 1885. in: Exploration Scientifique de la Tunisie. Paris 21 pgg. 5 Figg. [34, 35, 42, 46, 51, 53, 57, 58] Smith, A. C, Notes on the lobster Homarus arnericanus. in : Bull. U. S. Fish Comm. Vol. 5 p 121—125. [28] Smith, Sidn. J., 1. On some new or little known decapod crustacea, from the recent fish commission dredgings ofi' the east coast of the United States, in : Proc. U. S. Nation. Mus. Vol. 7 p 493-511. [33, 45, 46, 48, 50] , 2. Description of a new crustacean allied to Homarus and Nephrops. ibid. Vol. 8 p 167—170. [33, 47] , 3. On some genera and species of Peneidae, mostly from recent dredgings of the Uni- ted States Fish Commission. ibid. p 170— 190 [33,46] Spencer, W. Baldwin, The urinary organs of Amphipoda. in; Q. Journ.Micr. Sc. (2) Vol. 25 p 183—191 T 13. [29] *Sparre-Schneider, J., 1. Poniocrates norveffictts Boeck und. 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Unter Vermeidung des zweideutigen Ausdrucks Protopodit adoptirt Verf. die Termini Endopodit für Innenast, Exopodit für Außenast (Epipodit für den geißelartig umgestalteten Theil der Kieme), Stamm mit Basalglied (1) und Stammglied (2) für die beiden Grund- glieder jeder Extremität. Vordere Antennen. Da dieselben dem Vorderkopf angehören , der den übrigen Metameren keineswegs gleichzustellen ist , so sind auch sie den Gliedmaßen der letzteren nicht vollkommen homolog, wie sie ja auch im Bau von denselben differiren , eben so wenig sind sie aber als den Stielaugen gleichwerthige Sinnesorgane aufzufassen, da sie sich anders als diese entwickeln. Hintere Antennen. Die Ausgangsform mit 2gliedrigem Stamm und 2 langen Ästen ist bei den Protozoeen der Euphausia, Peneus, Se7-gestes, Lucifer gegeben ; wird der Stamm 4-5gliedrig, wie bei den meisten Malacostraken, so geschieht das durch Heranziehung der ersten Segmente des Endopoditen , und die Geißel entspricht dann nur einem Theil des letzteren ; bei Hemioniscus balani und Apseudes bleibt der Stamm 2gliedrig ; der Exopodit, bei Stomatopoden, Schizopoden und Macruren als Schuppe erhalten, fällt bei Nebalia (Stamm Sgliedrig], Brachyuren und Arthro- straken mit Ausnahme von Apseudes aus ; die ganze Gliedmaße wird rudimentär bei Hyperiden, Phronimiden, Bopyriden, Entonisciden. Für die Mandibeln, in der Ausgangsform beim Nauplius der Entomo- und Malacostraken eine W^ieder- holung der hinteren Antennen , wird die Asymmetrie der Kaulade , die als Theil des Basalgliedes längst nachgewiesen , als besonders characteristisch hervorge- hoben. Ob die Paragnathen der Ostracoden und Copepoden (bei Phyllopoden fehlen sie, wenngleich bei Apus etwas Ähnliches vorhanden ist) denen der Mala- costraken homolog sind , bleibt unerörtert ; jedenfalls sind sie keine besonderen Gliedmaßen und innerhalb der Malacostraken gleichwerthig; aus der Form der Paragnathen bei Euphausia schließt Verf. , daß sie bei den Malacostraken ihrem Ursprünge nach »die nach vorn gerückten, selbständig gewordenen Basalladen der vorderen Maxillen repräsentiren«. Von den Maxillen, die überall in der Zweizahl angelegt sind, trennt sich das hintere Paar bei den Copepoden in die bei- den Kieferfußpaare und verkümmert bei den Cladoceren. Bei den Phyllopoden sind beide Paare zu einfachen Laden reducirt; so auch bei Apus, wo das hintere mit dem zur Ausführung der Schalendrüse dienenden schlauchförmigen Fortsatz in Verbindung steht ; dagegen sind bei den Malacostraken beide Paare weit mehr entwickelt. Die am Außenrande des Basalgliedes der 1 . Maxille befindliche, mit Borsten besetzte Platte bei Calaniden und Pont elliden, die durch ihre Schwingungen 1 6 Arthropoda. die Respiration fördert , wird als Epipodit und als Vorläufer der Kiemen (an den folgenden Gliedmaßen) aufgefaßt ; aus ihr gingen letztere »im Wechsel der Function« hervor; Epipodit und Kieme sind morphologisch gleichwerthig, obwohl sie bei Branchipus und Artemia neben einander vorkommen ; sie können sich ver- treten, und wie letztere aus ersterem sich entwickelt hat, kann sie sich auch wie- derum zu einem schwingenden Anhang zurückbilden. Zur Beurtheilung der Malacostraken-Maxillen geht Verf. von den Larven der Decapoden mit freiem Nauplius- und Protozoea- Stadium aus ; Boas' Ansicht über die Zugehörigkeit der Laden der 1. Maxille wird gebilligt, seine Lacinia fallax des Basale jedoch be- zweifelt und die Deutung des Palpus der Amphipoden als 3. Lade zurückgewiesen; der Exopodit bleibt nur bei den Euphausiden erhalten. Bei der 2. Maxille der JEuphaustalsiVYe tragen die beiden Stammglieder je 2 Laden; Endopodit und Exopodit sind borstenbesetzte Lamellen, der erstere endständig, der letztere den Außenrand des 2. Stammgliedes bekleidend; ähnlich verhalten sich die Mysideen und Cumaceen ; doch ist bei letzteren und mehr noch bei den Tanaiden der Exo- podit zurückgebildet ; letzterer fällt bei den Stomatopoden ganz aus , während sich an den 3 oberen Gliedern seeundäre Lappen entwickeln ; bei den Decapoden sind die 4 Kauladen [Sergestes und viele Cariden ausgenommen) meist erhalten, der Endopodit mehrgliedrig , der Exopodit für die Regulirung des Athemwasser- stromes angepaßt; bei den Edriophthalmen, besonders den Amphipoden , fällt Endopodit und Exopodit aus und die Zahl der Laden wird vermindert. Die Maxillen der Euphausidenlarven sind trotz ihrer lamellösen Form leicht auf die vorderen spaltästigen Naupliusgliedmaßen zurückzuführen , und die Maxillen von Nebalia bieten eine Übergangsform zwischen beiden dar. Die 8 Brust fuß- paare. In der freien Protozoea ist das 1. und zuweilen auch das 2. Paar an- gelegt und zwar mit den für die vorderen Naupliusextremitäten characteristischen Merkmalen; von Epipodialanhängen noch keine Spur. Ähnliches gilt von den 6 übrigen Paaren, deren Äste sich indeß oft ungleichmäßig entwickeln ; gewöhnlich (Penaeiden, Macrurenlarven) eilt der Exopodit voraus; bei den Euphausiden da- gegen bleibt er zurück: eine seeundäre Abänderung, die weiterhin zu dem gänz- lichen Ausfall des Exopodites bei den Arthrostraken führte; der Verlust dieses Astes bei den Thoracostraken dagegen wird aus einer von hinten nach vorne vor- schreitenden Reduction erklärt, indem er bei Palaemonetes und Hippolyte am 8., bei Virbius am 7. und 8., bei Crangon am 6.-8. , bei anderen Macruren am 5.- 8. Paare überhaupt nicht angelegt wird, und sich bei Anomuren und Brachyuren nur noch die vordersten 2 Beinpaare mit fungirendem Geißelast entwickeln. Bei den aberranten Amphipoden ist das Basale öfters in die Brustwand aufgenommen, so daß der zugehörige Epipodit (Kiemen , Brutlamellen) dann von letzterer ent- springt ; bei den normalen Arthrostraken , wo das 1 . oder 1 . und 2 . (Tanaiden) oder auch das 1.-3. (Anceideu) Brustsegment sich mit dem Kopf zu einem Cepha- lothorax vereinigt , erhält lediglich das I . Brustfußpaar als Kieferfuß eine beson- dere Form und besitzt zudem einen Epipoditen ; derselbe dient in Gemeinschaft mit dem Maxillartaster bei Nebalia und den Tanaiden dazu, die Circulation in der Athemhöhle zu unterhalten, worin er bei Apseudes noch durch die Epipoditen des 2. und 3. Paares imterstützt wird. Bezüglich der die Athemhöhle bildenden Dupli- catur vermuthet Verf. , »daß auch an dem kopfähnlichen Cephalothorax der normalen Arthrostraken die Einschmelzung des 1 . Brustsegmentes unter Vermittlung einer rudimentären , später völlig rückgebildeten Duplicatur erfolgt sein mag.a Die Cumaceen schließen sich an die Tanaiden an. Bei den Stomatopoden werden die 5 vorderen Paare als Spaltfüße angelegt, gestalten sich aber später durch Verlust des Exopoditen und unter Bildung von Epipoditen zu Greif- und Kieferfüßen um ; die 3 letzten Paare bleiben Spaltfüße ohne Epipoditen, deren Besonderheiten mit 3. Crustacea. A. Anatomie etc. I. Allgemeines. 17 Hülfe von Larvenstadien erklärt werden ; der Begattungsanhang (auch bei Schizo- poden (^j des letzten Paares ist durchaus secundär. Die S Paare der Euphau- siden sind im Wesentlichen übereinstimmend gebaut, nur die ersten beiden zeigen einige Besonderheiten und das letzte oder die letzten beiden erfahren in den späteren Entwicklungsstadien eine Reduction des Exopoditen ; alle Paare tragen Epipoditen ; als secundäres Verhalten ist es anzusehen , daß sich an allen Paaren der Exopodit viel später als der Endopodit entwickelt. Weitere Differenzirungen treten bei den Lophogastriden und mehr noch bei den Mysiden auf; die ersteren besitzen ebenfalls noch tiberall Kiemen ; daß die letzteren sie auch einmal besessen haben , muss angenommen werden ; auch hier sind die Brutlamellen Epipodial- anhänge , die bei Boreomysis und Petalopus an allen Paaren auftreten ; bei an- deren sind sie bis auf 2 oder 3 Paare zurückgebildet worden , was daraus zu schließen, daß die Brutlamelle des 5. Paares hei Siriella angelegt wird, dann aber wieder verschwindet, und daß ihre Größenzunahme von vorne nach hinten erfolgt. An der Umbildung der beiden vorderen Paare zu Kieferfüßen nimmt bei den Decapoden auch das 3. Paar Theil, wiewohl dasselbe bei manchen Cariden noch mit dem 1 . Gehfußpaar Übereinstimmung aufweist ; an den 5 folgenden Paaren fällt der Exopodit aus, oder wird in seltenen Fällen ganz rudimentär ; die 3 Kie- ferfüße bewahren , mit Ausnahme der Sergestiden , den Exopoditen als Geißelan- hang und ebenso fast immer einen Epipoditen, welcher auch an dem 1.-4. Geh- fuß erhalten sein kann , hier in der Regel aber ausfällt. Auf die Brustfüße der Entomostraken wird nicht näher eingegangen, ihre Homologie mit denen der Malacostraken aber von Neuem betont. Die 6 Pleopoden-Paare der Malaco- straken werden den Brustfüßen mit Recht gegenüber gestellt, wiewohl die 2ästigen Anlagen der Kieferfüße von Squilla einerseits und die Pleopoden der Sergestiden andererseits Übergangsformen bilden ; im Allgemeinen bewahren sie die Grund- form der Crustaceenextremität ; das erste kann bei Macruren und Anomuren zu- rückgebildet werden oder ausfallen ; das letzte vereinigt sich häufig mit dem Telson zur Schwanzflosse. Als besondere Neubildungen aufzufassen und nicht in eine Linie zu stellen mit den Kiemenanhängen der Brustfüße sind die Kiemen an den Pleopoden von Stomatopoden , Callianiden , Siriella (^ , ferner der als Retinaculum fungirende Anhang, welcher bei Euphausiden, Stomatopoden, zahl- reichen Decapoden und Nebalia am Innenrande der inneren Lamelle entspringt, und ebenso die Häkchen am Stamme der Schwanzfüße der Arthrostraken und Cumaceen. — In einem eigenen Capitel gibt Verf. von dem Kiemenapparat der Decapoden, mit besonderer Bezugnahme auf Huxley's Arbeit von 1878, eine eingehende, von zahlreichen Abbildungen begleitete Darstellung; ob die Kiemen der Brustfüße von den Anneliden ererbt oder von den Protostraken selbständig erworben sind, bleibt dahingestellt; die letztere Annahme ist nicht ausgeschlossen, da die oben erwähnten Pleopodenkiemen jedenfalls erst von den betreffenden Crustaceen erlangt wurden ; unter einander sind sie jedenfalls gleichwerthig, und zwar ohne Rücksicht auf ihre Insertion, die ursprünglich am Basalgliede statt hatte und deren Verschiedenheiten secundär sind. Über die Einzelheiten dieses Capitels ist das Original nachzusehen. — Zoea und Nauplius. Verf. betont nochmals die cänogenetische Natur der Zoea [vergl. Bericht für 1884 H p 13], adoptirt für die Squillidenzoea den Terminus Pseudozoea (P. Mayer) und bezieht den Nauplius auf eine Annelidenlarve und zwar, da der Körpertheil des Nauplius, der die Extremitäten trägt , wenn auch thatsächlich nicht segmentirt , doch den Werth mehrerer Metameren besitzt , nicht auf die Trochophora , sondern auf ein darauf folgendes Stadium , dessen Rumpf bereits in Metameren gesondert ist ; die vorderen Antennen des Nauplius entsprechen den Tentakeln, die folgenden beiden Paare von Gliedmaßen sind von Parapodien der Annelidenlarve abzuleiten ; da Zool. JaliresbericM. 1SS5. II. 2 5 Arthropoda. aber solche am Kopftlieil imd Mimdsegment derselben nicht vorkommen , so ist das Segment der hinteren Antenne dem oralen Abschnitt plus dem 1 . Rumpfseg- ment der Annelidenlarve , und das Segment der Mandibel dem 2 . Rumpfmetamer derselben homolog zu stellen ; gleichwohl wird der Vergleich der Antennendrtise mit der Kopfniere aufrecht erhalten . Die phylogenetischenBeziehungen der Crustaceen zu einander werden im Gegensatze zu Boas und in Übereinstim- mung mit des Verf. 's Arbeit von 1876 nochmals kurz entwickelt; für die damals als Urphyllopoden bezeichnete Stammform der Crustaceen wird der Name Proto- straca eingeführt, um dem vielfach hervorgetretenen Mißverständnis zu begegnen, als hätte Verf. unter der Stammform im Grunde nur alte Phyllopodentypen ver- standen ; auf die Differenzen der Phyllopoden von den Protostraken (der taster- losen Mandibel , den reducirten Maxillen etc.) wird nachdrücklich hingewiesen. Schließlich gibt Verf. die folgenden beiden Stammbäume : r- '^ oS pH OJ , ;2 'S '^ ^ o a ^^ H ü CB P M Leptostraca Urschizopoden -Urmalaco straken •—1 r^ (i\iQV , paradyi D., simplex Pog., lucidulus K., ö^?7«s K., alpesiris D., diaphanus F. [auch bei Pest; V. Daday (^)], omatus Pog., afßnis G. 0. S., phaleratus K., wz'vafc D,, ignaeics Pog., niargoi D.. ßmbrtatus F., transsylvanicus D., ßscheri Pog. und 5 u. sp.; V. Daday (^). — Im Plattensee littoral; Cyclops viridis J., agilisK., phaleraius F., ßmbriatus ^ . , tenuicornis Gl?,., diaphanus S., die beiden letzten auch pelagisch ; v. Daday (^) . — In der Seine-Mündung : Cyclops serrulatus Fischer, signatus Kodh] Gadeau {^). Cyclops pidchellus Brady non Koch = ? lucidulus Koch — hyalinus Rehberg, tenuissi- mus H. = ? oithonoides Sars — vulgaris Koch, brevlcornis Cls., gigas Cls. und ? navicidaris Say = viridis Jur. var. — hicuspidatus Cls., Sars, bisetosus Rehberg = pulchellus Koch — pectinifer Cragin = serndattis Fischer — magnoctavus Cr. = fluviatilis H. — canthocarpoides Fischer, afßnis Sars, pygmaeus Rehb., adolescens (= perarmatus Cragin) und ? lascivus Pog. = phaleratus Koch — crassicornis Sars, gredleri Heller, pauper Fritsch , poppei Rehb. und ? magniceps Lillj. = fimbriatus Fischer — setosus Haldeman = ? serrulatus Fischer- — longicaudatus und igneus Cragin = sp. juv. — brevispinostis n. Vereinigte Staaten, p 148 Figg. — serrulatus Fischer var. elegans n. p 158; Horrick — pectinatus n. , horväthii n., frivaldszkyi n., brevisetosus n., tenuicaudis n. Siebenbürgen; v. Daday (') p 5-12. Familie Harpacticidae. Vergl. Forel, Du Plessis-Gouret. Poppe gibt Beschreibungen und Abbildungen zu Ectinosoma curticorne Boeck, Delavalia palustris Brdy., Huntemannia j'adensis Pp. und 1 n. sp. AurivilliuS weist auf Abweichungen der hochuordischen , an Molgula ampuUoides gefundenen Idya fxircata von Brady' s Beschreibung hin. — In den Vereinigten Staaten Cantho- camptus minutus 0. F. M. var. oocidentalis H., minosiensis Forbes und 2 n. sp., in. var.; ferner am Mississipi^i Sund Amymone sp., Laophonte similis Cls. ?, Harpac- ticus chelifer M. und 1 n. sp.; Herrick. — Im Plattensee littoral: Canthocamptus staphylinus i .] V. Daday (-) . • — Aus Siebenbürgen: Canthocamptus staphylinus Jur., dentatus Pog., horridus F., omatus D., treforti D. und 1 n. sp.; V. Daday (^). Bradya limicola n. Ocean Springs, Mississippi; Herrick p 185. Canthocamptus tenuicaudis n. Alabama, p 169 Figg. — northumbricus Bdy. var. americanus n. p 170 Figg. — minnesotensis n. Minnesota, p 173 Figg. — fontinalis Rehb. angezweifelt; Herrick — brevicomis n. Siebenbürgen; v. Da- day fi) p 14. Peltidiwji conophorum n. Jadebusen; Poppe p 191 Figg. Tachidius minutus Cls. zu EchinoSoma Boeck ; Poppe. Familie Calanidae. Vergl. Pouchet & Guerne. Sars (-) beschreibt Euchaeta norvegica Boeck. Im Finnischen Busen Dias discaudatus Giesbr.; Braun. Poppe gibt Beschreibungen und Abbildungen zu Temora longicornis 0. F. M. , Temorella clausii Hoek, afßnis Pp., Centropages hamatus Lillj. und 1 n. sp. — Im Kvänangfjord Calanus finmarchi- cus G. und Undinopsis bradyi (G. 0. Sars in litt.); Sparre-Schneider (2). — In der Seine-Mündung Temora velox Lillj.; Gadeau de Kerville [^]. — In den Ver- 38 Arthropoda. einigten Staaten: Heterocope sp. , Epischura lacustris Forbes, ßuviatilis H., Osphranticum lahronectum Forbes, Diaptomtis sanguineus Forbes, armatusYi.^ stag- ncdis Forbes, longicomis H. mit var. leptopus Forbes und 1 v. n., pallidus H. mit var. sicilis Forbes und 1 n. sp., Limnocalanus macrurus Sars ; ferner an der Mün- dung des Mississippi Dias longiremis Lillj.?, Teniora afßnis Poppe und 1 n. g.; Herrick. — Im Plattensee littoral und pelagisch : Diaptomus castor i .; v. Daday (2] ; dieser aus Siebenbürgen nebst gracilis G. 0. S. und 1 n. sp.; v. Daday (^) . Dtaptomus hacillifer n. Teich beim Plattensee; KÖlbel p 312 Figg. — minnetonka n. Minnetonka; p 138 Figg. — longicomis YL. var. similis n. Vereinigte Staaten; p 141 Figg. — gigantpus Hen'ick = stagnalis Forbes = ? loestwoodii Lubb. — Kentucky ensis Chambers = ? longicomis H.; Herrick — salinus n. Siebenbürgen; V. Daday i}) p 17 — alpinus n. Engstlensee, 1852 m hoch; Imhof (^) p 356. Dias intermeditis n. Jadebusen ; Poppe p 173 Figg. Euchaeta prestandreae Boeck 1864 und carinata Mob. = norvegica Boeck; SaPS \}). Potamoichetor fucosus Herrick = Osphranticum lahronectum Forbes; Herrick. Pseudodiaptomus n. nahe Metridia und Dtaptomus — pelagicus n. Mississippi Sund ; Herrick p 180. Scopiphora Pickering = ? Epischura Forbes ; Herrick. Familie Notodelphyidae. Aurivillius fand Notodelphys agilis Thor, in Phallusia mentula von Finmarken und beschreibt 2 n. sp. Doropygus demissus u, Kiemensack von Cynthia echinata, arcticus n. Kiemensack von Chelysoma macleyanum ; Aurivillius p 229, 233 Figg. Familie Buproridae. Aurivillius fand Buproris loveni Thor, in Phallusia mentula von Nord-Finmarken. Familie Corycaeidae. Raffaele & Monticelli theilen das Genus Lichomolgus in die »Untergruppen« Lichomolgus Thor., Sabelliphilus M. S. und Anthessius D. V. und geben Beschrei- bungen und Abbildungen zu Sabelliphilus insignis Aur. und 1 n. sp. , der erstere selten, der andere häufig an den Kiemen von Mytilus gallo-provincialis Lmk. Wright beschreibt eine neue Art aus Mya arenaria und macht biologische Bemerkungen über dieselbe ; des Verf.'s Darstellung wird von Raffaele & Monticelli kritisirt. — Im Mississippi-Sund Corycaeus varius D. ?; Herrick. Lichomolgus [Sabelliphilus) spinosus n. Golf von Neapel ; Raffaele & Monticelli P 4 Figg. Modiolicola Aur. zu Sabelliphilus M. Sars; Raffaele & Monticelli. Myicola n. (zu Sabelliphilus M. S.; Raffaelle & Monticellij zwischen Lichomolgus und Ergasilus — metisiensis n. Golf St. Lorenz; Wright p 120 Figg. Familie Ergasilidae. Im Plattensee : Ergasilus sieboldii; v.Daday (^j. — In den Vereinigten Staaten: E. depressus Sars ; Herrick. Ergasilus depressus Sars = sieboldii juv.; Horrick. 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 39 Familie Bomolochidae. Eucanthus marchesettii n. auf Motella tricirrata Bloch, Adria; Valle p 244. Familie Chondr aeanthidae. Aus der Adria: Chondracanthus ninnii Rieh. ; Valle. — Ostküste der Vereinigten Staaten: Anieacheres dühennM. S. ; Rathbun (^). Familie Caligidae. Vergl. Thomson. Im Mississippi-Sund Caligus americanus D. & P. ? nach Horrick. — Ostküste der Vereinigten Staaten : Caligus curhisM.., jjrodxictusT). '?, rapax M. E., Lepeoph- theirus nordmanüM.. E., salmonis Kr., Echtrogaleus coleop trattis Gixer . , denticulattis Sm., cranchii Leach, Nogagus curticaudis D . ^ laireillii IjQSiCh., Cecrops latreillii Leach, Laemargus muricatus Kr.: Rathbun (')• Familie Dicheles tiidae. Aus der Adria: Nemesis robusta v. B., Cycnus palUdus v. B., Philichthys stro- matei Rieh, ; Vallo. — Ostküste der Vereinigten Staaten ; Dichelestium skirionis H.j Anthosoma crassum Ab.; Rathbun (^). Familie Lernaeidae. Ostküste der Vereinigten Staaten : Lernaeonema radiata J^es., Lernaea branchialis L., Lernaeolophus sultanus Nordm., Haemohaphes cyclopterina Fabr.; Rathbun ('). Familie Lernaeopodidae. Ostküste der Vereinigten Staaten: Lernaeopoda (?) coregoni Sm., Brachiella rostraia Kr., Anchorella uncinataM..; Rathbun (*). Familie Argulidae. Vergl. Forel, Du Plessis-Gouret. Die Familie wird von Carus zu den Branchiopoda (Phyllopoda) gestellt. — Im Plattensee: Argidus foliaceus \ V. Daday (^j . — Ostküste der Vereinigten Staaten : Argulus laticauda Sm., latus Sm,, megalops Sm., alosae Gould ?; Rathbun (^). IV. Ostracoda. Vergl. Carus, Imhof [^)- Seguenza {^j setzt seine Bearbeitung der Ostracoden des Hafens von Messina fort [vergl. Bericht f. 1884 II p 43] ; s. Familien Cytheridae, Cypridinidae, Halocypridae . Familie Cypridinidae. Bei Messina Cgpridijia messanensis Cls. und 1 n. sp.; Seguenza (^). — Im Kvänangfjord Philomedes brenda Brd. ; Sparre-Schnelder (^j . Asterope gracilis n. Messina; Seguenza (^) p 58 Fig. Crossophorus Brady = Cypridina (J^ ; ClaUS (') p 24 Anm. 40 Arthropoda. Familie Halocypridae. Seguenza (-) beschreibt die Schalen vou Cytharella calabra S. , punctata Bdy. imd 1 n. sp. Cytherella areolata n. Messina; Seguenza (^j p 60 Fig. Familie Cytheridae. Seguenza (^) beschreibt die Schalen von Cytherura 4 n. sp.. Cytherideis gracilis Reuß, Paradoxostonia ßextcosum ^dy., ßscheri G. 0. S. Cytherura calcarata n., hiproducta n., speciosa n., ornata n. Messina; Seguenza i^) p 76-79, 110 Figg. Familie Cypridae. Vergl. Forel, Du Plessis-Gouret. Aus Siebenbürgen: Cypris imhera 0. F. M., ornata 0. F. M., virensiwx., in- congruens R., ovum Jur., reptans Brd., compressa Brd., aurantia Jnr., fuscata Jur., gibba R., serrata Nordm., Cyjiridopsis aculeata L., ot'c?«« 0. F. M., Notodromas monachus 0. F. M., Candona Candida 0. F. M., compressa K.; V. Daday (^). — In der Nähe von Freiburg, Baden: Notodromas monachus 0. F. M., Cypris punc- tata Jur., vidua 0. F. M., reptans Baird, incongruens (?) , Candona Candida 0. F. M.; bei Helsingfors : Cypris ovum und sp. [aculeata Lillj. ?) ; Nordquist (^). V. Cladocera. Vergl. Carruccio, Carus, v. Daday (^), Imhof [^). Familie Sididae. Vergl. Pouchet & Guerne, Forel, Du Plessis-Gouret. Im Plattensee pelagisch: Daphiella brachyura Liev., Sida crystallina 0. F. M.; V. Daday (-), beide auch in Siebenbürgen; v. Daday (^). Bei Minueapolis Daph- nella brachyura Liev., im Lake Michigan Latona setifera P. E. M. nach Herrick. Diaphanosoma excisum u. Nord-Queensland; Sars {^] p 13 Figg. Pseudosida n. bidentata n. Mobile Bay, Ala.; Herrick p 20 Fig. Sida elongata Sars = crystallina 0. F. M. var.; Herrick. Familie Daphniidae. Vergl. Pouchet & Guerne, Zacharias (^j , Forel, Du Plessis-Gouret. Von verschiedenen Punkten von Nord- America führt Herrick an: Moina recti- rostris 0. Y. 'K., ^^arfffZoa;« Weism., Ceriodaphnia cristata Bivge, alabame7isis H . . dentata B., laticaudata P. E. M. und 1 n. sp., consors B., Scap)holeberis mucronata 0. F. M., armata H., aurita F. [nasuta Birge) , angxdata H., Simocephalus ameri- canus B., daphnoides H., Daphnia pulex 0. F. M. mit var. n., rosea Sars, hyalina Leydig ?, galeata Sars, dubia H., kahlbergensis Seh. und 2 n. sp., Bosmina longi- rostris M., cornuta Jur., striata H., Macrothrix laticornis Jur., tenuicornis Kurz, pauperl^., Lathonura rectirostris 0 . F. M., Lyncodaphnia macrothroides 'S.., Ily- ocryptus spinifer H. — Aus Siebenbürgen : Macrothrix rosea Jur., laticornis Jur. 3. Crustacoa. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 41 und 1 u. sp., Bosmina cornuta oViY. [awcli bei Pest; V. Daday ('^)], lonfficornis heyd., Moina rcctirostris Jur., brachiata Jur., hanffyi D., Ceriodaphnia rotimda Str., ^jmZ- chella G. 0. S., reticulata Jur., incgops G. 0. S., quadrangula 0. F. M., Scapholeberis ohtusa Seh., mucronata 0. F. M., Shnocephalus serrulatus K., vetulus 0. F. M.. Daphnia apicaia Kurz , lacustrisG. 0. S., oä^ms« Kurz, Schoedleri G. 0. S., pennata 0. F. M., pulex Deg., psittacea Brd., magna Str., schaefferi Brd., longispina Leyd. [die letzten beiden auch bei Pest; v. Daday (^) ] und l n. sp.; v. Daday (^). — Im Plattensee pelagisch : Bosmina cornufaJ., longirosti'is 0. F. M., Daphnia kahl- hergiensis Seh.; V. Daday [^] . Bosmina maritima P. E. M. = longirostris var.; Pouchet & GuGrne. Ceriodaphnia cornuta n. Nord-Queensland; Sars (^) p 26 Figg. — scitula n. Minne- sota; Herrick p 40 Figg. Daphnia lumholtzii n. Nord-Queensland; Sars (^) p 18 Figg. — serrulata n. Sie- benbürgen; V. Daday (*) p 24 — sima auct. = Simocephalus vetulus P. E. M.. rotundata Say zu ? Ceriodaphnia, ovata Sars = ? schaefferi Baird, pennata Sars = schaefferi y€i pulex M., lacustris Sars = ? longispina M. var., apicata Kurz = ? cm- cullata Sars var., vitrea K. = ? hahlbergensis Seh. var., pulex var. nasutus n. Ala- bama, Minnesota p 57 Figg., minnehaha n., magniceps n. Minnehaha Creek p 57 u. 64 Figg.; Herrick. Lyncodaphnia macrothroides Herrick = ? Ophryoxus gracilis Sars ; Herrick. Macrothrix sericaudata n. Siebenbürgen; V. Daday (^) p 21. Moina propinqua n. Nord-Queensland; SarS (*) p 29 Figg. Simocephalus rosfratus n. Ocean Springs, Mississippi ; Herrick p 47. Familie Lynceidae. Vergl. Zacharias p), Forel, Du Piessis-Gouret. Von verschiedeneu Punkten der Vereinigten Staaten führt Herrick an : Eury- cercus lamellatus 0. F. M., Acroperus leucocephalus ? Koch, Camptocercus macrurus M., rotundus H. , Alonopsis latissima Kurz, media Birge, Leydigia quadr angularis Leyd., Graptoleberis testudiiiaria F., Crepidocercus setiger Birge, Alona angulata B., sanguinea P. E. M., lineata F., quadrangularis M., oblonga B., affinis Leydig, por- recta B., spinifera Seh., parvula Kurz und var. tuberculata K., glacialis B. mit 2 n. var., Alonella excisa F. und 1 n. sp., Fleuroxus stramineiis B., acutirostris B., denticulatus B., hamatus B., unidens B., procurvus B., Chydorus sphaericus 0. F. M., ^Zo5osMs Baird, caelatus Seh., Monospilus dispar Biaxs. — Aus Siebenbürgen : Monosjnlus tenuirostris F., Chydorus sphaericus 0. F. M. , globosus Brd., Fleuroxus truncatus 0. F. M., adwieus Jur., trigonellus 0. F. M., striatus Seh., hastatus G. 0. S., nanus Brd., exiguus L., excisus F., tusnadiensis D., Crepidocercus setiger Birge, Alona rostrata K., testudinaria F., lineataF., guttataG. 0. S. [die letzten beiden auch bei Pest; v. Daday (^j ], cos^ato G. 0. S., latissima Kurz, tenuicatidis G. 0. S., quadrangularis 0. F. M., affinis Leyd., leydigii Sch., Alonopsis elongata G. 0. S., Acropierus angustatus G. 0. S., leucocephalus K. und l n. sp., Camptocercus lillje- bor gii 8ch.; V. Daday (^]. — • Im Plattensee littoral: Monosjnlus tenuirostris F . , Alona rostrata K., quadrangularis 0. F. M., affinis Leyd., acanthocercoides F. und 1 n. sp. ; V. Daday (^j . Acroperus transsylvanicus n. Siebenbürgen; v. Daday (') p 21. -«4Zonö modesta n. ? Vereinigte Staaten ; Herrick p 97 Figg. — spinifera Birge = oj^jm"» Leydig j UV., y^acta/«s Birge varr. tuberculata m., laevis n. ibid.; p 101 Figg. Alonella pulchella n . Minneapolis; Herrick p 103 Figg. 42 Arthropoda. Chydorus latus Sars = ? globosus Baird ; Herrick. Leptorhynchus nom. n. pro Harporhynchus Sars; Herrick p 114, Leydigia australis n. Nord-Queensland; Sars (^) p 35 Figg. — quadrangiilaris Her- rick non Leydig = acanthocercoides F. ; Herrick. Pleuroxns balatonicus n. Plattensee ; V. Daday (^) p 4 — insculptus Birge, exiguus und aculeatus Seh. = ? Alonella excisa F., stramineus B. = ? hastatus Sars, afßnis n. Alabama; Herrick p 111. Familie Polypliemidae. Vergl. Pouchet & Guerne, Zacharias p). Im Finnischen Busen Evadne nord- mamiiliov.; Braun. Im »Großen Teich« (Riesengebirge) Polyphemus pediculus Deg. in großer Menge ; Zacharias (^). — Aus Siebenbürgen : Polyphemus pedi- culus He^., V. Daday (^), bei Pest und im Plattensee : Leptodora kyalina \ v. Da- day (^,^). — In den Vereinigten Staaten: Polyphemus pediculus \j. und l n. sp., Bythotrephes longimanus Leydig, Leptodora hyalina Lillj.; Herrick. Polyphemus stagnalis n. Vereinigte Staaten; HerrIck p 122. VI. Phyllopoda. Claus (') [p 16 Anm.] rechtfertigt den Gebrauch der Namen Phyllopoda für die Ordnung, Branchiopoda für die Unterordnung. Familie Branchipodidae. Kulczycki (^) characterisirt die Familie und ihre Genera und beschreibt 1 n. g. [A. W.] — In Tunis BrancMpus piseiformis Seh. ; Simon. — Aus Siebenbürgen: Branchipus stagnalis Sch., diaphanus Pr., Artemia salina L. ; V. Daday (^). Callaonella n. Körper verhältnismäßig sehr kurz ; 3 Kopf-, 1 1 Thorax- und 9 Ab- domen-Ringe. Untere Antennen wie bei Artemia. Oberlippe mit 2 Einschnitten. Abdomen kurz. Schwanzblättchen ungefähr von der Basis an mit Borsten besetzt. Für Artemia jelskii Grube. Callao, Peru; Kulczycki (^) p 591. [A. W.] Polyariemia hazeni n. Point Barrow, Süßwasserlachen in der Tundra; Murdoch p 522. Familie Apusidae. Claus (^) gibt Abbildungen der Mundtheile von Apus. S. Fischer (^) charac- terisirt die Familie und gibt eine Tabelle der Species [A. W.]. — In Tunis Apus cancri/ormis Sch. (Fig.), numidicus Gv . (Fig.); Sjmon. Aus Siebenbürgen A. can- criformis; V. Daday ('). Apus varsoviensis n. Warschau, haliciensis u. Galizien, luhlinitnsis n. Lublin ; S. Fi- scher (1) Figg. [A. W.]. Lepidurus kozubowskii n. Galicien; S. FiSCher (^) Figg. [A. W.]. Familie Estheriidae. In Tunis Estheria cycladoides Joly u. 2 n. sp. ; Simon. Estheria angulatan. (Fig.), mayetixi. (Fig.) Tunis; Simon p 19-20. 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 43 TU. Leptostraca. Vergi. Carus. Familie Nebaliidae. Vergl. Köhler. Sars (•*) stellt die von Boas behauptete nalie Beziehung von Nebalia zu den Euphausiiden in Abrede und sieht dies Genus als eine Unterordnung derBrancbio- poda an. — Im Kvänangfjord Nebalia bipes Fab.; Sparre-Schneider (^j. Nebalia [Paranebalia] longipes Suhm Fig. in Ch all enger p 151. Nebaliopsis n. Sars in Ch allenger p 743. VIII. Stomatopoda. Vergl. Brooks in Challenger, Carruccio, Carus, Köhler. Familie Squillidae. Vergl. Brooks. Claus (*) bildet Gliedmaßen von Squilla und deren Larven ab. IX. Cumacea. Vergl. Carus, Collin. Blanc stellt auf embryologische Untersuchung gestützt die Cumaceen in die Nähe der Isopoden. Familie Diastylidae. Sars (^) beschreibt Diastylis nodosa Sars. — Im Firth of Forth Diastylis laevis Norm.; Henderson (*). Im Kvänangfjord Zawjorojosyj/smte G. O.S., Leucon nasicus Kr., Eudorella emarginata Kr., Diastylis rathkei Kr., edtvardsii Kr. ; Sparre-Schneider (^) . Für Ctima rathkei ist der Eingang in den Finnischen Busen die Ostgrenze der Verbreitung ; Brautl. Hemilamprops serrato-costata n. Kerguelen ; Sars in Challenger p 742. X. Schizopoda. Vergl. Carus, Collin, Köhler. Sars (^) bearbeitet die Challenger- Schizopoden [über die vorl. Mitth. vergl. Bericht f. 1883 II p 35]. Terminologie. Bate's Termina für die Abtheilun- gen des Rumpfes und die Gliedmaßen, obwohl mehr wissenschaftlich, werden zu- rückgewiesen, weil nicht allgemein auf die Arthropoden anwendbar, und die äl- teren unbestimmteren Bezeichnungen vorgezogen ; die Körperabschnitte werden alsCephalon, trunk und tail, die Jugendformen der Euphausiiden als Larven, die der anderen Familien als Puppen bezeichnet. Systematik. Die Ordnung wird ein- gehend characterisirt und die Euphausiiden (gegen Boas) als eine Familie der- selben beibehalten. Verf. unterscheidet die 4 Familien Lophogastridae [Lopho- gaster M. S., Ceratolepis G. 0. S., Gnathophaxisia Suhm, Chalaraspis Suhm p. p.), Eucopiidae (^«copm Dana) , Euphausiidae [Euphausia D., Thysanopoda M. E., Bentheuphausia n., Nyctiphanes G. 0. S., Boreophausia n., Thysanoessa Brandt, Nematoscelis G. 0. S., Stylocheiron G. 0. S.), Mysidae [Petalopht/ialmus Bnhm, Boreomysis G. 0. S., Amblyops G. O.S., Psetidomma G. 0. S., Erythrops G. 0. S., Parerythrops G. 0. S., Anchialus Kr., Mysidopsis G. 0. S., Leptomysis G. 0. S., 44 Arthropoda. Siriella D., Mysideis G. 0. S., Proniysis D., Euchaetomera G. 0. S., Hemhnysis G. 0. S., Mysis Thomson, Macrojjsis G. 0. S., Mysidella G. 0. S., Heteromysis Smith). Die Ausbeute des Challenger lieferte 57 sp., synoptische Tabellen sind für Genera und Species aufgestellt; cfr. sämmtliche Familien. — Über Cerataspis cfr. Claus (^) und Sars (^j, s. oben p 25. Familie Mysidae. Vergl. Nordquist (^j. Claus (^) gibt Abbildungen zu Gliedmaßen von Mysis und Siriella\ SarS (-) be- schreibt Erythrops glacialis Sars, Parerythrops spectahilis Sars, Pseudomysis abyssi Sars, Boreomysis nohilis Sars, scyphops Sars, cfr. Nachtrag. SarS (^j gibt Be- schreibungen und Abbildungen zu Petalophthalmus armiger Suhm (Atl. Oc, 2500 Fdn.i, Boreomysis (Nördl. u. Südl. Meere, Tiefsee) scyphops G. 0. S., oh- tusata G. 0. S., microps G. 0. S.; Amblyops crozetii Suhm (Crozet-Inseln, 1600 Fdn.) ; Pseudomma (Nördl. u. Südl. Meere, 33-1675 Fdn.) sarsüSuhm, australe G. 0. S. ; AncJiialus (Atl. u. Gr. Oc, 33 Fdn. bis Oberfl.) typicus Kr., angustus G. 0. S., pusillus G. 0. S. ; Mysidopsis incisa G. 0. S. (Süd- Australien 33 Fdn.); Siriella (fast cosmopolitisch, pelagisch) thompsoni M. E., gracilis D.; E^ichaetomera (Großem. Atl. Oc, pelagisch) typica G. 0. S., tenuis G. 0. S. ; Heteromysis (Atl. Oc, littoral) 1 n. sp. Im Kvänangfjord Erytkrops goesii G. 0. S., Mysis inermis Rathke, oculata Fabr., mixta Lillj.; Sparre-Schnelder [^). In der Seine-Mündung Mysis vulgaris Thomps., Kervillei G. 0. S., Gastrosaccus spinifer Goes, Macro- psis slabberiv. B. mit var. minor; Gadeau (-). Im Jadebusen Podopsis slabberi V. B., Mysis vulgaris Ihom^^. ; Poppe. Im Firth of Forth Podopsis slabberi w. B.; Henderson ('). Im Finnischen Busen il/yszs n. sp. innom.; Braun. Amblyops australis G. 0. S. zu Pseudomma; SarS (^). Anchialus trxincatus G. 0. S. = typicus Kr.; SarS (^] . Heteromysis bermiulensis u. Bermudas Inseln; SarS (-^j p 216 Figg. Mysis rayii n. Point Barrow, 5 Fdn.; JVJurdoch p 519 — kervillei n. Seine- Mündung; Sars (^) p 90 und 92 Fig. — ynoebii Dohxn = Anchialus typicus Kr.; Sars (3). Promysis jiusilla G. 0. S. zu Anchialus Kr. — galatheae Kr. = ? Siriella thompsoyii M. E.; Sars(3). Siriella vitrea E., brevipes D. ? = thompsoni M. E.; SarS (3). Familie Euphausiidae. Claus (^) gibt Abbildungen zu Gliedmaßen von Euphausia und deren Larven; Sars (3) gibt Beschreibungen und Abbildungen zu Euphausia (cosmopolitisch, mit Ausnahme der arctischen Meere, pelagisch) pellucida D., similis G. 0. S., splendens D., murrayi G. 0. S., superba D., antarctica G. 0. S., mucronata G. 0. S., yr«- ciYts D., ^lüa G. 0. S., spini/era'G. 0. S., latifrons G. 0. S.; Thysanopoda (pe- lagisch) tricuspidata M. E., obtusifrons G. 0. S., cristata G. 0. S. und 1 n. sp.; Bentheuphausia amblyops G. 0. S. (Mitte des Atl. Oc, Tristan da Cunha, S. v. Au- stralien, 1000-1800 F.); Nyctiphanes australis (Australien, pelagisch); Thysa- noessa (cosmopolitisch, pelagisch) gregaria G. 0. S., macrtira G. 0. S.; Nemato- scelis (Gr. u. bes. Atl. Oc, pelagisch) megalops G. 0. S., microps G. 0. S., icnella G. 0. S., rostrata G., 0. S.; Stylocheiron (Atl. u. Gr. Oc, pelagisch) ca- ritiatum, suhmii, longicorne, elongatum, abbreviatum, alle G. 0. S. — Im Kvä- 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 45 Bangfjord Eiqjhausia inermis Kr. ; Sparre-Schneider (^) . Im Firtli of Forth Nycti- phanes norwegica M. S.; HendcrSOn (^). Euphausia müUeri Cls. = pellticida D.; SarS {^)- Thysanopoda bidentata G. 0. S. = Euphausia pellucida D. — amblyops G. 0. S. zu Bentheuphausia — microphthalma vl. Nord-Atlant. Ocean; SarS (■*] p 107 Fig. Familie Lophogastridae. Milne-Edwards bildet ab Gnathophausia zoea Will.-Suhm. Sars (^) gibt Be- schreibung und Abbildungen zu: Lophogaster iypicus M. S. (Norwegen, S. vom Cap d. g. H., 98-150 Fdn.); Cemtolepis harnata G. 0. S. (Südwest d. Gr. Oc, pelagisch!); Gnathophausia (cosmopolitisch, mit Ausnahme der aret. u. antarct. Meere, 255-2200 Fdn.) ingens Dohrn, gigas Suhm, calcarata G. 0. S., ivillemoesii G. 0. S., affinis G. 0. S., elegans G. 0. S., zoea Suhm, longisjnna G. 0. S., gracilis Suhm; Chalaraspis alata Suhm (S. v. Australien, 1800 F.). Familie Eueopiidae (Chalaraspidae) . Sars (^) gibt Beschreibung und Abbildungen zu Eucopia australis Dana (Nor- den u. Mitte des Atl. Oc, zwischen Cap d. g. H. u. Kerguelen, S. v. Australien, Jipan, 1000-1975 Fdn.). XI. Decapoda. Vergl. Carruccio, Carus, Collin, Göldi, Köhler. Über die Auflösung der Anomuren und die Vereinigung der Hippiden mit den Brachyuren vergl. Claus (') p 71. Czerniavsky gibt unter eingehender Berück- sichtigung der Literatur, Synonymie und der zahlreichen varietates, formae und variationes Beschreibungen und Abbildungen zu 52 Decapoden des Schwarzen Meeres; vergl. Carididae, Thalassinidae, Astacidae, Paguridae, Porcellanidae, Majidae, Ocypodidae, Grapsidae, Telphusidae, Eriphiidae, Portunidae, Cancridae. S. J. Smith (^) beschreibt von der Ostküste der Vereinigten Staaten 11 meist neue sp. Fam.: Majidae, Galatheidae, Carididae. Lovett gibt Notizen über britische Decapoden der Familien Thalassinidae, Astacidae, Carididae. Familie Sergestidae. Cfr. Bäte in Ch all enger. Kiemen von Sergestes (Fig.) Claus (^); derselbe p 51 verwerthet die Gestalt des Kiemenapparats für die Selbständigkeit der Familie gegenüber den Peneiden. Familie Carididae. Cfr. Bäte in Ch alleng er. — Claus (^j gibt Beschreibung und Abbildungen von dem Kiemenapparat mehrerer Carididen. IVIIIne-Edwards bildet ab: Cloroto- cus gracilipes M. E., Pandalus ensis M. E., miles M. E., quadridentatus M. E., siylopus M. E., longipes M. Yj., parfaitii M. E., martius M. E., leptocerus Sm., propinquus Sars, sagittarius M. E., serratus M. E., tenuipes Sm., longicarjnis M. E., geniculatus M. E., brevirostris M. E., Pentomics parvulus M. E., Heterocarpus cn~ sifer M. E., oryx M. E., laevis M. E., alexandrii M. E., Tozexima cornutum M. 1:1., serratum M. E., \H\oplophorus gracilirostis M. E., spinicauda M. E., Notostomus tiegans M. E., corallinus M. E., gibbosus M. E., Acanthephyra annata M. E., pur- 46 Arthropoda. jmrea M. E., dehilis M. E., Gonatonotus crassus M. E. var. longi7-ost)-is M. E., Stylodactylus rectirostris M. E., serratus M. E., Nematocarcinus cursor M. E.. Pon- iophilus jacquetii M. E., Glyjihocrangon aculeatumM.. ^., spinicaudaM. E., nobile M. E., Richardina spinicincta M. E., Benthesicymus bartletti^m. S. J. Smith (^j be- schreibt Hymenodora glacialis G. 0. S., Benthoecetes bariletti 8m.. und 6 n. sp. S. J. Smith (^J beschreibt Parapenaeus longirostris Lucas, politus Sm., constrictus Stimp. mit var. similis, barbatus Deh. und 2 n. sp., Hymenopenaeus 2 n. sp., Solenocera siphonocera Vhx\ . , Xiphope7iaeus kr oyeri Heller, Aristeus ^ foliaceus Heller. Über Crangon vulgaris Fabr. vergl. Lovett. Kölbel gibt Beschreibung und Abbildungen zu Solejiocera distiiicta Deh. und 1 n. sp. SarS (^) beschreibt Sclerocrangon sale- brosus Ow., Bythocaris leucopis Sars, p ay er i Heller, Hymenodora glacialis Buchh. cfr. Nachtrag. Im Kvänangfjord Sclerocrangon horeasVYi.., Sabinea septemcarinata Sab., Hippolyte gaimardi Edw., polaris Sab.jSjjinus Sowb., turgidaKi'., jnisiola Kr., Pandalusa7inulicornisljeSich\, Sparre-Schneider (2) . ImJadebusen Crangonvulgarish.; Poppe. In der Seine-Mündung Pa^aemo?t serratus h., squilla Fabr., varmns Leach, Pandalus a7inulico?'nis JjeSiCh., Hippolyte c/'aneAü' Leach, Caridina desmaresti'i&.iW.., Crangon vulgaris Fabr.; Gadeau ['^] . Im Firth of Forth Hippolyte 2^usiola Kr.; Henderson (^). Im Schwarzen Meer Virbius gracilis Heller (varr. longirostris, brevi- rostris Gz.), brullei Guer. (varr. elongata, fortior Cz.] und 2 n. sp., Athanas nite- scens Leach (varr. rotundicauda, pontica Cz.) und 1 n. sp., Alpheus 1 n., Leander varians Leach, rectirostris Zadd. (var. transitans et varr. typicae Gz.), latreillianus Risso (varr. typica, transitans, ititermedia, aberrans, sculpta Gz.), squilla L. (varr. typica, prototypa, brevidigitata Gz.), antennarius M. E., edioardsi H. (varr. brevidi- gitata, intermedia, prototypaGz.) und 1 n. sp., Nika edulis Risso, Lysjnata 1 n., Cran- gon maculosus ^3iihk.e ivsirr. typica, brevirostris, suchutnica Cz .) , Steiracrangon In. sp.; Czerniavsky. \n Iwnls, Palaemonetes variaiis Leach; Simon. Jjher Hippolyte cranchii Leach und Lysmata seticauda Risso cfr. Köhler (^j. Acanthephyra microphthalma u., brevirostris n. Ostküste der Vereinigten Staaten ; Smith (1) p 502-506. Alpheus similis n. Schwarzes Meer; Czerniavsky p 30. Arete diocletiana Heller = Athanas nitescens Leach — monoceros Heller (= var. lon- gispina Gz.) und Paulson = Athanas transitans Gz.; Czerniavsky. Athanas alpheoides n. Schwarzes Meer; Czerniavsky p 26. Benthesicymus altus n. Bäte in Ghalienger p 528 Figg. Benthonectes w.ßlipes n. Ostküste der Vereinigten Staaten; Smith (^) p 509. Bythocaris gracilis n., na7ia n. Ostküste der Vereinigten Staaten; Smith [^] p 497 -500. Cheraphilus ferox Sars = Sclerocrangon salebrosus Ow.; SarS (^j . Cryptophthalmus costae Prest., Gosta-Phil. = Alpheus dentipes Hell. varr. [costae u. typica); Czerniavsky. Ephyrinan. benedicti m. Ostküste- der]Vereinigten Staaten; Smith (^) p 506. Euatya sculptilis n. Orinoco; Kölbel p 317 Figg. Hippolyte obliquimanus Dana= Virbius gracilis H. var. brasiliensis Cz. — mauritanicus Lucas = brullei Guer. var. ; Czerniavsky. Hymenopenaeus robustus n. Garaibisches Meer — mudestus n.. Delaware Bay; S. J. Smith (3) p ISO, 183. Leander brandti n. Schwarzes Meer; Czerniavsky p 43 Figg. Lysmata aberrans n. Schwarzes Meer; Czerniavsky p 63 Figg. Pandalus dapifer n. Point Franklin, 13 1/2 Fdn.; Murdoch p 519. Parapenaeus n. für die oben genannten Species und megalops n. Garaibisches Meer, goodeiu. Bermuda, Golf von Panama; S. J. Smith (^j p 172, 176. 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 47 Steiracrangon orientalis n. (varr. longicauda, hrevicauda Cz.) Schwarzes Meer; Czer- niavsky p 73. Virhius j^t'oteus Paulson pp. = gracilis Heller -\- brüllet Guer. — leptocerus H. = ? gracilis H. juv. — tenuirostris n. , rectifrons n. Schwarzes Meer; Czerniavsky p 20 Figg. Familie Astacidae. Cfr. *Ninni. Faxon (^) beginnt eine systematische Monographie der Astaciden mit der Be- arbeitung von Huxley's Potamobiinae, d. h. den Genera Cambarus und Astacus: die hauptsächlichsten unterscheidenden Charactere derselben sind : C. Letzter Thoracalsomit ohne Kiemen ; die zweilappige Podobranchialplatte fehlt am vor- letzten Fußpaare ; A. Ein Kiemenpaar an der Wandung des letzten Thoracalso- miten ; die Gliedmaßen vom 2. Maxillipeden bis zum vorletzten Fußpaare incl. mit einer gefalteten Lamina an den Podobranchien. Die Arten von C. werden in 5 Gruppen getheilt: blandingii ^2iX\.2iT\. (var. acw^a), /aZ/ax Hagen, hayiY., clurkii Girard, troglodytes Le Conte, manicidatus Le C, lecontei Hg., angustatus Le C, jmbescens F., spiculifer Le C, versutus Hg., allein F., penicillatus Le C., wieg- manni Erichson, pellucidus Teilkampf, typhlobms Joseph, stygius Bundy — si- mulajis F., mexicamis Er., cribensis Er., advena Le C, carolinus Er., gracilis B. — 5or^oMw Fabricius (var. robtisla (jIY .) , acumt?iatus F . , latimanus IjG G . , dubitisY., diogenes Giv . , nebrascensisGi'lX., argillicolaY . , u/ileriF., girardianus F., cornutus F., hamulaltis Cope & Packard, yo/r/ßw« F., extraneus Hg. — lancifer Hg., afßnis Say, sloanii ^ . , propinquus Gir. (var. sanborniiY., obscura Hg.], harrisonii Y . , virilis Hg., immunisH^. (var. spinirostris Y .) , mississipensis Y . , palmeri Y . , alabametisis F., compressus F., medius F., rusticus Gir., spitiosus B., putnami F., forcepsY. — moH/fe^wwae Saussure, sJmfeldtii Y . Das Genus A. wird in 3 Gruppen getheilt: das Subgen. Cambar oidea F. msi japonicus Dehaan, daui-icus Pallas, schrenckii Keßler , die nordamericanischen Arten Tilamathemis Stimpson , leniusculus Dana, oreyanws Eaudall, trowbridgii8t., nigresce7is 8t., gambelli Gh\, und die europäischen Arten torrentium Schrank, pallipes Lereboullet, ßuviatilis ßondelet, leptodactylus Eschscholtz (var. angulosa Rathke), pachypus'R., colcMcusK. Alle Arten sind beschrieben und abgebildet [vergl. Bericht f. 1884 H p 47], jeder Gruppe ist ein Schlüssel beigegeben; die ausführlich behandelte Syonymie ist in der Arbeit selber nachzusehen. Kiemen einer Homarus-hsivve (Fig.); Claus (^). Milne- Edwards bildet ab Phoberus coecus M. E. [cfr. Bericht f. 1881 U p 46]. Über Cerataspis cfr. Sars (^), s. oben p 25. Im Schwarzen Meere Astacus leptodactylus Esch., pachypus Rathke (var. lacustris Gz.), colchicus Keßler, Homarus vulgaris M. E.; Czerniavsky. JJhev Astacus ßuviatilis, Homarus vulgaris 'M.. Y., Nephrops norvegicus Leach, Nephrojysis cornubietisis Bäte vergl. Lovett. Aus Siebenbürgen : Astacus ßuviatilis L. ; V. Daday (^]. In Kansas Cambarus simulans F., gracilis Bundy, diogenes Gir., ümmmis Hag. mit var. spinirostris F., virilis Hag. und 2 n. sp.; Faxon ^2^ Cambarus nais n., neglectus n. Kansas ; FaXOn (^j p 140, 142. Eunephrops n. verwandt mit ^s^acws, Nejihrops und Ne2}/iropsis ; bairdii n. sp. Golf von Darien, 155 Fdn.; S. J. Smith ('-] p 167. Familie Palinuridae. Riggio gibt Beschreibung und Abbildung zu Polyc/ieles iyphlops Heller Q ; in welcher Tiefe das Thier lebt, ist nicht sicher, üeber die Ervoniden vergl. Bäte 48 Arthropoda. in Challenger; abgebildet werden: Willemoesm leplodacft/la Qnhm, Pohjcheles crucifera Subm, Eryoneicus coecus Bäte. Über die Synonymie von Ameosternus und Palinurellus vergl. Pfeffer und Bericht f. 1852 II p 43. Im Schwarzen Meere Palinurus vulgaris Ltr.; Czerniavsky. Pohjcheles doclerlemi nom. nov. für P. typhlops Heller; Riggio p 103. Familie Galatheidae. Cfr. Hahn. Über Galathea nexa Embl. cfr. Köhler ('). Kiemenapparat von Galathea (Figg.) Claus ('). Milne-Edwards bildet ab Mimida tenuimana Sars, Biphjchus vittatus M. E. , Elamw7iotus vaillantii M. E., Galathodes aci/tus M. E., rosacexis M. E., marionis M. E. Diptyc/ms ifisigjiis n. Prince Edwards I., 310 Fdn. — spinima^-ginatus n. Kermandec I., 520 Fdn., Philippinen, 500 Fdn. — parvulus n. Magelhaen Str., 400 Fdn. — politus Kermandec I., 600 Fdn. — australis n. Port Jackson, Kermandec I., Banda I., 360-600 Fdn. — gracilimamis n. Port Jackson, 410 Fdn. — tridentatus n. Ostindischer Archipel?; Henderson f^) p 419-421. Elasmonotus latifrons n. Admiralitäts I., 1070 Fdn. — marginatus n. N. -Seeland, 11 00 Fdn. — miersii n. Fiji L, 300 Fdn. — asper n. Vor Brasilien, 1500 Fdn., Magelhaen Str., 245 Fdn.; Henderson (-) p 416-417. Eumunida smithii n. Ki Isln., 129 Fdn.; HenderSOtl (-) p 413. GaJacantha bellis n. Juan Fernandez, 1375 Fdn.; HendersOtl (^) p 418 — rostrata M. E., bairdii 8m. zu Mimidopsis Wh.; S. J.. Smith \^) . Galathea pusilla n. vor N-S-Wales, 120 Fdn. — incompicua n. vor den Banda-Inseln, 360 Fdn. ; Henderson (^j p 407-408. Galathopsis n. subgen. [von?] laevigatau. Admiralitäts I., 150 Fdn. — dehilis n. Fiji I., 300 Fdn. , Philippinen, 375 Fdn.; Henderson (2) p 417-418. Munida spinosa n. vor Prince Edward Isl. , 310 Fdn. , vor der Mündung des La Plata, 600 Fdn. — normanin., granulata n., tuberciilata n., spinicordata n., vitiensis n. Fiji-Inseln, 210-315 Fdn. — squamosa n., proxima n., inomafa n. Admiralitäts Isln., 150 Fdn. — scahra n. Ki Isln., 129 Fdn. — militaris n. Fiji L, Ki I., Am- boina, Philippinen, 100-300 Fdn. — snnfipaulin. St. Paul's Felsen, 10-60 Fdn. — hastcelli n. vor N-S-Wales, 120 Fdn. — gracilis n. N-Seeland, 275 Fdn. — curvirosiris n. Philippinen, 37 5 Fdn. — spinifrons n. Fernando Noronha, 7—25 Fdn. ; Henderson (^j p 408-413. Mxmidopsis hrevimana n. Admiralitäts I., 1070 Fdn. — subsquamosa n. Japan, 1875 Fdn. — milleri n. Philippinen, 700 Fdn. — trißda n. Magelhaen-Str., 400 Fdn. — pilosa n. Gilolo I., 825 Fdn. ; HenderSOn (-) p 414—415 — crassa n., similis n. Ostküste der Vereinigten Staaten; S. J. Smith (^j p 494-497. Ptychor/aster milne-edwardsi n. Magelhaen Str., 400 Fdn. — laevis n. Ki I., 129 Fdn.; Henderson (^j p 418-419 und Henderson in Challenger p 901 Fig. Familie Thalassinidae. Kiemenapparat mehrerer Thalassiniden (Figg.); ClauS (^). Thaumastochelrs zaleuca Suhm (Fig.) ; Bäte in Challenger. Im Schwarzen Meere Callianassa sub- terranea Mont. (varr. fypica, laticaicda, intertnedia. major, poniica Gz.), GeUa litto- ralis Ptisso ; Czerniavsky. Über Gebia deltura Leach, Axius stirhjnchus Leach, Cahcaris 7nacaiulreae Bell vergl. LOVCtt. 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 49 Familie Paguridae, Kiemenapparat von Pa^e«Ms , JBirffus [F'igg.); Claus[^). — Milne-Edwards bildet ab Xylopagurus rectus M. E., Pylocheles affassizii M. E. SarS (^) beschreibt Eiipagurus tricarinatiis Norm. ; cfr. Nachtrag. — Im Kvänangfjord Eupagurus pu- bescens Kl'.; Sparre-Schneider (^j . Im Schwarzen Meere CUbanarius misanthropus Risso (varr. suchumica,jaltensisGz.), D ioge7ies varians Co^ta.; CzerniaVSky. ImFirth of Forth Enpagurus pubescens Kr. ; Henderson (^) . In der Seine-Mündung Pagurus be)'nhardus\j., Diogenes varians Qo^iSu] Gadeau (-^j . Tglaspts n. anomala n. Süd-Pacifischer Ocean, 2375 Fdn.; Henderson in Chal- lenger p 900 Fig. Familie Hippidae. Kiemenapparat von ^/5?7tia, dubia Cz.), villosus Risso, Eriphia spinifrons Herbst (var. Orientalis Cz.); Czernlavsky. Pilumnus laevimanus Dana = hirtellus L. var. : CzerniaVSky. 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 51 Familie Portunidae. Kiemenapparat von Purtumts (Fig.) ; Claus (^). Im Schwarzen Meere Portunus arcuaius Leach (var. convexafroyis) , marmoreus Leach, longipes Risso ? , corrtigatns Penn., holsatus Fabr., Cafcinus maenas Li. (var. medtierranea Cz.) ; CzGmiavsky. Portunus marmoreus Leach cfr. Köhler (^) . Im Jadebusen Carcinus mamas L.; PoppG. In der Seine-Mündung Platycarcinus pagurus L., Portunus puber Lt., mar- 7noreus hesich, Carcinus maenas Ij . : GädOdU i^) . Platyonychis iridescens n. Ki I. ; Miers in Challenger p 588. Familie Corystidae. In der Seine-Mündung Corystes cassivelaunus Penn. ; Gadeau i^] . Familie Telphusidae. In Tunis TelpJmsa ßuviatiUs Latr. ; Simon ; dieselbe in Cypern; Plateau (^) Telphusa granosa n. Socotra ; KÖlbel p 321 Fig. — intermedia n. (varr. taurica, typica, marina Cz.) Schwarzes Meer; Czernlavsky p 148 — depressa Krauß ysly . j'ohnstom n. Kilimanjaro; Miers (^j p 237. Familie Pi nnotheridae. Kiemenapparat von Pinnotheres (Fig.); Claus (^). Familie Gonoplacidae. Gonoplax sinuatifrons n . Amboina ; Miers in Challenger p 588. Familie Ocypodidae. Kiemenapparat von Ocypoda (Fig.) ; Claus (^) . Im Schwarzen Meere Gelasimus coarctatusM. E. ; Czemiavsky. Familie Grapsidae. Kiemenapparat von Grapsus (Figg.); Claus (^). Nach Rathbun ('-) wurde am Westende von Cuba eine ungeheuere Menge von jungen Grapsiden {Sesartnal) beobachtet. — Im Schwarzen Meere NautUograpsus minutus L. , Heterograpsus lucasiM. E. {yax. pontica Gz.), Pachygrapsus marmoratus Stimps. ; CzernlavSky. Braehygrapsus kingsleyi n.\ Miers in Challenger p 587. Heterograpsus gemellari Costa = lucasi M. E. ; CzernlaVSky. Pseudorhombila [Pilumnoplax] normanin. Tristan d'Acunha, Agulhas Bank; abyssicola n. Fiji I.; Miers in Challenger p 587, 588. XII. Amphipoda. Cfr. Carus, CollJn, Köhler, "Sparre-Schneider (i). Haswell [^] macht Mittheilungen über einige Australische Amphipoden ; cfr. Orchestiidae, Gammaridae, Corophiidae, Caprellidae.« Familie Caprellidae. Haswell (^) führt für Australien folgende Sp. an: Proto novae Jwllandiae Hasw. [Figg. bei Haswell (^)] u. 2 n. sp. (synoptische Tabelle) , Protella atistralis Hasw. 4» 52 Arthropoda. (Figg.l, echinata Hasw., haswelliana Mayer, Hircella corniffera Ha.&w . , Caprella aequilibra Say., attenuata Dana, inermis Hasw. Sars '■}) beschreibt Caprella microtnberculata S. , spinosissima Norm., Aeffina spinifera Bell. — Im Kvänang- fjord Caprella septemtrionalis Kr. ; Sparre-Schneider (2) . Im Firth of Forth Proto ventricosa Müll. ; HenderSOn (1). Bei Sydney Protella australis Hasw.; Chilton (*) . Aegina spinosissima Stimps., Sars = spinifera Bell; SarS (^) . Caprella horrida S. = spinosissima Norm. ; SarS (^) . Hircella n. (Mayer) für Proto [Caprella) cornigera Hasw. ; HaSWell '[^i p 999. Proto condylata n., spinosa n. Port Western, Victoria; Haswell {-) p 993, 995 Figg. Familie Dulichiidae. Sars (■^) beschreibt Dulichia tuherculata Boeck , hirticornis S. , macera S. — Im Kvänangfjord D. tuherculata B. ; Sparre-Schneider (2). Dulichia septe7itrionalis S. = tuherculata Boeck; SarS (2) — arctica n. Point Barrow, 5 Fdn. ; MurdOCh p 522. Familie Corophiidae. Sars (^) beschreibt Podocerus assimilis S. , brevicornis S. (cfr. Nachtrag), ^em«'- corMz's S., Erichthonius megalops S., Unciola petalocera S. — Ueber Xenocheira fasciata H., Haplocheira typica H., Harmonia crassipes H., Cyrtophiimi, Laemato- phibis Bruz. u. 1 n. g. cfr. Haswell (^). Bei Sydney Microdeuteropus mortoni Hasw., tenuipes Hasw. (=? mortoiii $); Chilton (^j. In der Seine-Mündung Coro- p/«mm longicorne Latr., Podocerus falcatus Mont. ; Gadeau (2). Im Firth of Forth Corophium tenuicorne Norm.; HenderSOn [^] ■ Im Kvänangfjord Amphithoe podo- ceroides R., Podocerus anguipesKv., Corophium crassicorneBv. ; Sparre-Schneiderp). Cerapus megalops S. zu Erichthonius ; SarS (^) . Cyrtophium hystrix H. ZU Laematophilus Bruz. ; HaSWell (^). Dexiocerella n. für Cyrtophium dentattim H., /ofiaifa n. Port Stephens und laevis n. Port Molle; Haswell (^) p 107, 110, 111 Figg. Microdeuteropus mortoni Hasw., tenuipes Hasw., maculatus G. M, Th. = Aora typica Kr. ; Chilton (^j . Podocerus longicortiis Sars non Heller = tenuicornis S.; SarS (^). Teraticuin typicum Chilton zu Seha Costa (= *S. saundersi Stebbing?j; Chilton (^j. Familie Orchestiidae. In der Seine-Mündung Talitrus saltator Mont. ; Gadeau {-) . Im Firth of Forth Hyale mlssoni Rathke ; HenderSOn (^j . Ueber Talitrus sylvaticus Hasw. u. das Genus Allorchestes vergl. Haswell (^). Bei Sydney Allorchestes rupicola Hasw. und 1 n. V.; Chilton (^). Allorchestes crassicornis Hasw. var. coogeensis n. ; Chllton [^) p 1035 Figg. Talorchestia tiimida n. Dunedin; ThomSOn (^j p 57 7. Familie Gammaridae. Vergl. Forel, Du Plessis-Gouret, Nordquist (2). Äurivillius gibt Beschreibung und Abbildungen zu Atidania pecti7iata G. 0. S. aus 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 53 dem Kiemensack von Phallusia mentula und sp. und macht Mittheilungen über Aristias tumidus Kr. aus Ascidien von Spitzbergen und Grönland. Sars (-) beschreibt Socames hidentlculatus Bäte (cfr. Nachtrag), Hipponiedo7i holhölU Kr., Änonyx cal- caratus Sars, typhlops Sars, Onesimus turgidus Sars (cfr. Nachtrag), leucopis Sars, Tryjihosa pusilla Sars, Acidostoma laticorne Lillj,, Phoxus oculatus Sars, Harpinia ahyssi Sars, carhmta Sars, mucronata Sars, serrata Sars, Urothoe ahbreviata Sars, Epimeria loricata Sars, Paramphithoe euacantha Sars, Oediceros macrocheir Sars, Halirages quadridentatus Sars, Cle'ippides quadricuspis Heller, Amphithopsis pulchella Sars, Müera tetiera SsLYS, Meliia pallida 8aYS, Amat/iillopsis spiniyera B.e\\ev, Bru- zelia serrata Sars, Metopa spectabilis Sars, aequicornis Sars, Danaia abyssicola Sars, Lilljeborgia aequicornis Sars, Tritropis appendiculata Sars, Ampelisca odontoplax Sars, minuticornis Sars, Byblis abyssiSsiVS, Autonoe megac/teir Sars. — Andcmia gigantea St., AcantAozone tricarinata S)t. (Figg.); Stebbing in Challenger. Schneider (-) fand in den Schachten von Clausthal wie von Glückauf (bei Burgk i. S.) (?aOT- marus puteanns Koch. — Im Kvänangfjord Socames vahli Kr., Hippomedon hol- bölUKv., A7io77yx lage72a Ky . , ptimtlus Lillj., Onesimus edwardsUKY., Menigrates In., Orc/iome7ie minuttis Ky., twibo Goes, Tryphosa na7ioides\A\\]. , Harpi7iia phi- Tnosa Kr., Metopa alderi Bäte U. In., Syrrhoe crenulata Goes, Oedice7-os lynceus M. S. , microps G. 0. S., Monoculodes borealis'Q. , longirostris Goes , tuber culatus B., packardi^., latimanus Goes, lo7igicornis B. u. 1 n., Hali7nedo7i saussureiB., brevicalcar Goes, megalops G. 0. S., Aceros phyllo7\yx M. S., Pleustes panophs Kr., Ve7-tu7n7vus serratus Fab., Halirages fidvocinctus M. S., tridentatus Bruz., Cal- liopitis laeviusculus Kr., Tritropis i7ißata G. 0. S., Pardalisca cuspidata Kr., Gam- marus locustah., Melita deAitata Kr., Amathilla saÄewi Leach, ? Melphidippa borealis B. (Figg.), Ampelisca eschrichtii'KY., macrocephalalAW] . , Byblis gatmardiKl'., Proto- medeia fasciata Kr. ; Sparre-Schneider (^). In Tunis Gammarus pulex L. u. 1. n. sp. ; Simon. Über Neobule algicola, Aspidophoreia, Stegocephalus latus H., Ampe- lisca attstralisJl., Lysianassa und A7io7iyx, Eusirus dubiusH., Leucothoe spinicarpa, Mega7noera sue7isisB.., mastersii H., Moera vgl. HaSWell (^). Über Anonyx ed- icardsiiKY., Dexa7nine spi7iosa heach cfr. Köhler ('). Aus Siebenbürgen: GaniTnarus pulex L., Niphargus stygius Seh. ; V. Daday (^). Bei Lüttich Niphargus putea7ius\ van Beneden. Im Firth of Forth Ste7wthoe pollexia7ia Bäte, Ampelisca aequicor7ns Bruz., IphimediaobesaB,3i\Mk.Q., P/ie)-7isabicuspisK.Y., /ucicolaLieSLCh, CalUopius bide7i- tatus Norman, Aora gracilis Bäte, Naenia tuber culosa Bäte, excavata Bäte; Henderson (^) . In der Seine-Mündung Gammarus mari7itcs Leach, locusta L., pulex L. ; Gadeau (2). Im Jadebusen Gammarus locusta L. ; Poppe. Bei Sydney Atylus megalophtlialmus Hasw., llppus Hasw., Moera subcari7mta Hasw., petriei G. M. Th. u. 2 n. sp.; Chilton (*). Im Finnischen Busen Po7itoporeia furcigera Bruz., Cal- Uopius laeviuscitlus Kl'.; Braun. Aca7ithozo7ie polyaca7itha u. Point Franklin, 13 Y2 Fdn. ; Murdoch p 520. Atylus homochir n. Port Stephens; Haswell (^) p 101 Figg. Cyproidea dam7io7iie7isis n. St.ir cross, Devonsh. ; Stebbing p 59 Figg. Dexa77iine miersii Yi. Torres-Straits ; Haswell ('') p 102 Figg. Eusirus affi7iis n. Port Stephens; Haswell (^) p 101 Figg. Gamarella lo77gicor7iis n. Jersey; Köhler (^) p 48. Gamma7'us tuneta7ius n. Tunis; Simon p 6 — pulex var. subterra7ieus n. Schachte v. Clausthal; Schneider (2; Figg. Glyceri7ia affinis n. Sydney; Chilton (^) p 1036 Figg. Megamoe7-a thomsoni Miers = 7nastersii Haswell ; HaSWOll (') • Melita for7nosa n. Point Barrow ; leü7iis n. Norton Sund, 5 Fdn. ; Murdoch p 520- 521. 54 Arthropoda. Menigrates [Orchometief) arcticus n. Kvänangfjord ; Sparre-Schneider [^) p 63 Figg. Metopa Sölsbergi n. Kvänangfjord; Sparre-Schneider (^) p 71 Fig. Moera rubromaculata , ramsayi nnA Jestiva Chilt. = spinosa Stimps. ; HaSWell (^) — tenella Sars = tenera Sars n. n. ; Sars [^) — festiva n. Sydney; Chilton (^) p 1037 Figg. Monoculodes tesselatus n. Kvänangfjord; Sparre-Schneider i'^) p 81. Paranaenia typica Chilton = ? Moera approximans Hasw. ; Chilton (^}. Pherusa coerulea n, Obelisk (N. -Seeland] ; Thomson {^] p 576. Stcgoplax Sars = Cyproidea Hasw. ; Stebbing. Familie Hyperiidae. Bovaliius \^) gründet auf Mimonectes n. g. eine neue Familie Mimonectidae : Vorderkörper kuglig, Augen getrennt ; obere Antennen lang, dünn, untere klein, 4gliedrig, Mandibeln ohne Palp, Maxillipeden wohlentwickelt. Cystosoma neptuni Suhm (Fig.). Stebbing in Challeuger. Im Firth of Forth Hyperia oblivia Kr.; HenderSOn (^). Im Kvänangfjord Parathemisto abyssorum Boeck, Themisto Ubellula Mandt ; Sparre-Schneider (2) . Hyperiopsis n., vöringii n. 65° u. 72° N., 4° u. 5° 0. ; Sars (2) p 231 Figg. Mimonectes n. loveni n., sphaericus n., steenstrupn n. Atlantischer Ocean ; Boval- iius (i)p3, 11, 12, Figg. XIII. Isopoda. Cfr. Carruccio, Carus, Collin, Köhler (^j. Haswell [■^) gibt eine Liste der Australischen Isopoden (71 sp.) und beschreibt einige neue und unzulänglich bekannte Arten ; cfr. Sphaeromidae , Pranizidae, Tanaidae, Asellidae, Anthuridae. Familie Tanaidae. Boas führt die Differenzen zwischen seinen Angaben über Apseudes [vergl. Be- richt f. 1883 n p 10] und denen von Claus [vergl. Bericht f. 1S84 II p 29] haupt- sächlich darauf zurück, daß er A. spinosus, Claus aber A. latreiUei untersuchte ; er erhält aufrecht, daß die Augen gestielt und 6 bewegliche Brustringe vorhanden sind; Claus (^) bestreitet die Richtigkeit dieser beiden Angaben für A. latreiUei und erklärt Boas' Beweisführung auch betreffs der andern Art für mangelhaft. Sars (2) beschreibt Sphyrapus serratus Sars, Cryptocope vöringii Sars, Lcptognathia longiremis Lillj., Typhlotanais cornutus Sars. Im Firth of Forth Tanais vittatus Rathke ; Hetl- derson (^). Haswell (^) beschreibt und bildet ab Tanais tenuicomis Hasw. und 1 n. sp. Paratanais linearis n. Port Jackson; HaSWeli (^) p 1008 Figg. — ignottis n. Sydney; Chilton (4) p 1042 Figg. Familie Anthuridae. Haswell (^) beschreibt und bildet ab .^«^/ojo/ißsmajOMrjoMreiwi Hasw., Paranthura crassicornis Hasw., australis Hasw. und 2 n. sp. Eisothistos n. Mit den Anthuriden in der Körperform und den Pleopoden verwandt ; verschieden von denselben in den Pereiopoden und in der dorsalen Krümmung 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 55 des Embryo ; in einigen Punkten auch den Aegiden älinlicli — vermiformis n. in den Tuben von Vermilia, Watson's Bay (Port Jackson?); Haswell {^) p 677 Figg. Pasanthura dimenensisn. B.oh2iXt, m/emn. Port Jackson; Haswell (^)p 1011, 1012Figg. Familie Pranizidae. Sars (^) beschreibt Anceus siygius Sars, hirsutus Sars, robustus Sars. — Im Kvänangfjord Anceus elongatus Kr. ; Sparre-Schneider (^). Anceus (lanielii n. Brest; HeSSe ("^) Figg. — [Praniza] forpedinis n. in den Spritz- löchern eines Torpedo, Ceylon; Walter Figg. — feroxn. Port Jackson; Haswell (^) p 1005 Figg. Familie Cymothoidae. Bovalllus (^) gibt eine Tabelle der Aegiden-Genera und beschreibt ein n. g. Beddard (^) bearbeitet das Genus Serolis Leach und gibt eine Darstellung der vom Challenger erbeuteten 16 Arten: paradoxa Fabr., convexa Cunn., scÄyMez Lütken, Za^i/Vons White, sepfemcarinala Miers, cornuta Studer, bromlei/ana Buhm., neaera^., gracilis B., antarctica B., tuberculata Grube, australiensis B., elongata B., longi- caudata B., palUda B., minuta B. ; weitere 6 sp. werden besprochen: trilobitoides Eights (= ? cornuta Studer), gaudichaudii K. & M. E. , jofo??« Dana, acutangula Grube?, serm Lucas, ca7-ina(a hock, [über die n. sp. und die Synonymie vergl. Bericht f. 1884 II p 60]. S. Fischer (2) vertritt die Ansicht, daß Ononia [Cymo- thoa) amurensis Gerstf. getrenntgeschlechtlich ist. — Über Conilera cylindracea Mont. cfr. Köhler (M. Aegiochus n. Hinterkörper so lang wie das Pereion ; 5. Pereionsegment länger und tiefer als das 4. — nordensMöldii u. Cap Farewell, 120 Fdn. ; Bovallius (^j Figg. Anilocra edwardsii n. auf Maena vulgaris ; SaJtlt-Loup p 175. Rocinela lilljeborgün. Marstrand, Westküste von Schweden; Bovalllus (^) Figg. 0?jo?2/rt n. Kiele an den Femora der 4 vordersten Thoracalbeine wenig hervorstehend. Vordere Antennen an ihren Ansatzstellen wenig von einander entfernt. Schwanz- platte eben so lang wie breit, breiter und länger als das Abdomen ; für Cymothoa amurensis Gerstf. (Leibeshöhle von Idus Waleckii Dyb.) im Amur und seinen Zu- flüssen; S. Flscher (2) p 3. [A. W.] Familie Sphaeromidae. Köhler (^) kritisirt Hesse's Memoire sur la famille des Spheromiens. — In der Seine-Mündung >SjüÄae/-oma rMyecaM6?a Leach ; Gadeau ^). Im Jadebusen «S^Äaeroma rugicauda Leach ; Poppe. Bregmocerella n. mit langem Stirnfortsatz; letztes Körpersegment verlängert, zuge- spitzt; Außenast der Uropoden rudimentär — tricomis n. Port Jackson; Has- well (3) p 1004 Fig. Cymodoce cylindracea Mont. var. punctata n. Jersey; Köhler p 46. Leptosphaeroma n. gottschei n. Mogi, Südost von Nagasaki; Hllgendorf [^) p 185. Familie Idoteidae. Über Idotea emarginata Fab. und tricuspidata Desm. cfr. Köhler (^). Sars p) be- schreibt Arcturus baffini Sab., tuber osus Sars, hystrix Sars, Astacilla granulata 56 Arthropoda. Sars, Glyptonotus megalurus Sars, Synidotea bicuspida Ow.; cfr. Nachtrag. — Im Firtli of Forth Idotea linea?-is Fenn.; Henderson [^] . Im Jadebusen Idotea tricuspi^ data Desm.; Poppe. In der Seine-Mündung Idotea linearis Penn.; Gadeau [^]. Cleantis tubicola n. Auckland; ThomSOn [^) p 577. Idotea festivan. Canterbury, Neu- Seeland; Chilton (^] p 123 Figg. — sabiiii Kr. Sars 1880 = Glyptonotus megalurus Sars var.; SarS (-^j. Synidotea incisa Sars = bicuspida Ow.; SarS {}) . Familie Munnopsidae. Sars (-) beschreibt Eurycope gigantea Sars ; cfr. Nachtrag. Familie As eil idae. Vergl. Forel, Du Plessis-Gouret. Dybowski gibt eine Tabelle der AsellusSiXiQn und beschreibt 2 n. sp. A. aqua- ticus Auct. umfaßt nach ihm mehrere Arten. Kulczycki (^) characterisirt die Fa- milie und insbesondere das Genus Asellus und beschreibt die polnischen Arten [A. W.l; Sars {^) beschreibt Acanthoniscus typhlops Sars, Nannoniscus bicuspis Sars Ischnosoniaquadrispinosum^ars. Haswell (^j beschreibt und bildet ab *S'^me^//rtMm armatum Hasw. — Über Janira maculosa Leach und Limnoria lignorum Rathke cfr. Köhler ('). Im Kvänangfjord Janira maculata und Jaera albifrons Leach; Sparre-Schneider [^]. Im Firth of Forth /«era a7Z>2/rons Leach ; Henderson (M- In der Seine-Mündung ^seZ^Ms a^Mß^/cMs L.; Gadeau p). Aus Siebenbürgen: Asel- lus aquatious L.; V. Daday (^) . Asellus angarensis n. Angara, Abfluß des Baikalsees; haicalensis n. Baikalsee; Dy- bowski p 23, 51 Figg. — aquatious var. cracoviensis n. Krakau; goplanus n. Goplo-See mit var. switeziana n. Switei-See (Gouv. Minsk); Kulczycki (i) p 410 -413. Jaeropsis n. brevicornis n. Grottes du Gouliot, Insel Sark; Köhler [^) Figg. Neasellusu. Äer^we^ens/s n. Kerguelen. Beddard in Challenger p 882 Fig. Familie Bopyridae. Sars (^: beschreibt Notophryxus clypeatus Sars. — Im Schwarzen Meere Bo- pyrus ocellatus Cz. häufig an Virbius gracilis Heller, B. squillarum an Leander rectirostris -^ Czertliavsky. Im Kvänangfjord Phryxus abdominalis Kr.; Sparre- Schnelder {-]. Dajus siriellae n. auf Siriella thompsotii U. E.; SarS (3) p 221 Figg. Heterophryxus n. appendicidatus n. auf Euphausia pellucida D. Cap Verde -Inseln; Sars (3) p 220 Fig. Leptophryxus Buchholz, Hoek = Dajus Kr.; SarS [^]- Notophryxus lateralis n. auf Nematoscelis megalops S. Süd-Atl. Oc; globularis n. auf Thysanoessa gregaria S. Nord-Pacif. Oc; SarS (^j p 220 Figg. Familie Oniscidae. Budde-Lund 'vergi. Bericht f. 1880 II p 61] gibt eine systematische Mono- graphie der Erdasseln und theilt dieselben in4Tribus : Onisci mit den Sectiouen 3. Crustacea. B. Faunistik und Systematik. 3. Systematik. 57 Armadilloidea (Genera: Armadillo 60 sp. , worunter 24 autori ignotae, 19 n., Euhelum n. 1 n., Pseuclarmadillo 1 sp., Peryscyphis (non Cercocytonus n.) 3 sp. 2 n., Sphaeroniscus 1 sp., Cylloma 1 sp., Eluma 1 sp., Armadilliclium 45 sp., wo- runter 15 aut. ign., 9 n., ferner aut. igu.: Pyrgoniscus White) und Oniscoidea [Porcellio mit den 7 subgenera Cylisticus 7 sp., 4 n., Porcellio 106 sp., worunter 35 aut. ign., 29 n.; Hemilepistus 11 sp., worunter 1 aut. igu., 2 n., Metoponor- thus 40 sp., 5 aut. ign., 17 n., Rhyscotus 1 sp., leptotrichus 5 sp., 1 aut. ign., 2 n., Bathytropa 2 sp., 1 n., dann Platyarthrus 3 sp., 1 aut. ign., Oniscus mit den 5 subgenera Oniscus 6 sp., worunter 4 aut. ign., In., Philoscia 26 sp., 6 aut. ign., 6 n., Alloniseus 8 sp., Idub., 2 n., Lyprobius 3 sp., 2 n., Scyphax 3 sp., 2 aut. ign., In., dann Deto 4 sp., 2 aut. ign.. In., Armadilloniscus 6 sp., 3 aut. ign.. In., Scleropactes n., 3 n.; ferner aut. ign.: Acanthoniscus YiMiie,, Ourachae- /•Ms White) . Ligiae [Trichoniscus mit den subgen. TncÄonwcMS 9 sp., 4 aut. ign., 1 n., und Haplophthalmus 2 sp., dann Titanethes 5 sp., 4 aut. ign., Ligi- dium S sp., 4 aut. ign., 3 n., Ligia 17 sp., 5 aut. ign., 2 n., ferner aut. ign. Styloniscus Dana, Stymphalus Budde-Lund, Euphiloscia Packard). Tylides [Tylos 9 sp., 3 aut. ign., 2n.). Syspasti [Syspastus 1 sp.) . Synoptische Ta- bellen sind für die Genera jeder Abtheiluug und die Species jedes Genus gegeben. Über die Synonymie vergl. die Arbeit selbst. — Über Ligia oceanica Fabr. cfr. Köhler (^). Aus Siebenbürgen: Oniscus murariush., Titanethes albus Seh., graniger Fr.; V. Daday (^). In Tunis ArmadilUdium granulatum Br., Porcellio lugubris K., variabilis Luc, laevis Latr., olivieri Aud., albineus B.-L., Lucasius tardus B.-L., Leptotrichus pa7izeri Aud., Hemilepistus reaumuri Ana., Metoponorthus sexfascia- ttis K., Tylos armadillo Latr., ferner 4 n. sp. ArmadilUdium tigris n. Madera; grandinatum n. Sicilien; mareoticum n. Ägypten; ba- dium n. Ägypten, Sicilien; Aw-i^wm n. Sicilien ?; Budde-Lund p 50-74 — quinque- pustulatum n. Algier; serratumn. Süd-Frankreich; muricatum n. Carthago; ßssum n. Cypern; id. p 294-298. Armadillo bidens n. Insel Oahu ; grossus n. Neu-Holland; orbicularis n. C. d. g. Hoffnung ; clausus n. Caracas , parvus n. Seychellen ; piisum n. Florida ; mticidus n. C. d, g. Hoffnung; 7iigrinus n. ibid ?; bi/rons n. Neu-Holland; multipunciatus n. Caracas; rußcomis n. Neu-Caledonien; misellus n. Van-Diemensland; obscurus n. Japan; sodalis n. Ägypten; pubescens n. C. d. g. Hoffnung; exilis n. Noumea; aculeatus n. Süd-Africa; translucidum n. Neu-Caledonien; rugosus n. Australien: Budde-Lund p 16-42, 282-291 — mayetin. Tunis; Simon p 7. Ai-madilloniscus candidus n. West-Algier; Budde-Lund p 238 — letourneuxin. Tunis; Simon p 8. Deto acinosa n. Africa; Budde-Lund p 235. Eubelum n. lubricum n, Süd-Africa; Budde-Lund p 292. Ligia cinerascens n. Japan ?; gracilipes n. Süd-Africa; Budde-Lund p 265, 270. Ligidium cursorium n. GvodiXitn; fragile n. Caucasus; tenue n. Insel Sitka ; Budde- Lund p 256-258. Lucasius myrmecophilus hwc, Km. zu Porcellio; Budde-Lund [cfr. Lucas) ■ Eesta- bilirt, mit myt'mecophilus, pallidus, tardus, pauper; Simon. Oniscus simonii n. Süd-Frankreich; [Philoscia) exigua n. Frankreicli; vilis n. C. d. g. Hoffnung; annulicornis n. Madagascar; ^jy^wam n. Corsica; angusticauda n. Borneo; mitia n. C. d. g. Hoffnung; [Alloniseus] brevis n. »Indes«; pigmentata n. Madagas- car ; [Lyprobius] lentus n . A\^\Qr ; wof/es^ws n. Süd- America ; [Scyphax] setiger n. Neu-Caledonien; Budde-Lund p 205-232. Peryscyphis G erst, [non Cercocytonus n.) albescens n., convexus n. Ägypten; Budde- Lund p 43-44. 58 Arthropoda. Fhilougria marina n. Seewasser-Lachen bei Sydney; Chilton {^] p 463 Figg, — thomsoni n. Spar Bush, Neu-Seeland; id. (ß) p 576. Porcellio [Cylisticus] mitis n. Caucasus; rotabilis n. Krim; dentifrons u. Astrachan; earinatus n. patria ?; [Porcellio) emaciatus n. Sicilien ?; bistriatus n. Türkei; spre- tus n. Sicilien; trachealis n. Moldau; longijicnnis n. Süd-Kußland; interpolator n. Ordus; planarius n. Sicilien; brevipennis n. Algier; ^cw^^ews n. Syrien; ingenuus\i. Lissabon; macuUpesn. Madera; longicauda n. Algier; spinipennis n. Süd-Frankreich; montanus n. ibid.; granuliferus^i.. Süd-Spanien; blattarius n. Algier; parvus n. Krim; uljanini n. Sevastopol; sctVws n. Madera; albinus n. Algier; imbutus n. Sicilien; angustulua n. Algier; Simulator n. ibid; [Hemilepistiis] pectinatus n. u. nodosus n. Asiatisches Rußland; [Metoponorthus) parvulus n. Deutschland; meleagris n. Süd- Frankreich ; rectifrons n. Krim; tingitanus n. prope urbem Tingitem; linearis n. Central-Asien; laevigatus n. Constantinopel; politulus n. Sumatra; ^«Voraiis n. Krim; parcusn. Algier, Kancysch; ms^mc^ws n. Constantinopel; ajiproximatiis n. Sevastopol; lacteolusn. Algier; sabuleti n. Algier; simplex n. Frankreich; fuscomamioratus n. Al- gier; madagascariensisn. Madagascar; peregrinus n . patria ?; [Leptotrichus] tauricusn. Krim; squamatus n. Süd-Africa; [Bathytropa] costata n. Algier, Süd-Frankreich; Budde-Lund p 77-198 ; rMnocerosn. Zara ; praeustusn. Algier ; purpureus n. Oran; succinctus n. Tolania, Valentia; tardus n. Algier; paupem. ibid.; id. p 301-306 — ÄoiJaei Luc. non = transmutatus B.-L.; budde-lundi n., letourneuxi n. Tunis; Si- mon p 10-13. Rhyscotus n. n. für Sietiomacrus ; Budde-Lund p 191. Scleropactes n. concinnus n., peruvianus n., incisus n. Peru; Budde-Lund p 240-241. Syspastus n. n. pro Helleria Ebner; Budde-Lund p 2S0. IVichoniscus cavertiicola n. Frankreich, Spanien; Budde-Lund p 246. 7y/os (über Priorität des Namens cfr. Simon p 15) opercularis n. Philippinen; nivetis n. patria?; Budde-Lund p 271-218. C. Paläontologie. Vergl. Carus. Zittel (^) gibt eine kritische Bearbeitung unserer Kenntnisse über fossile Kruster. Unter den Cirripedien sind fossil bekannt Lepadiden, Vermeiden und Balaniden mit den Chthamaliden und Coronuliden ; paläozoische Formen sind sehr selten und nur aus der erstgenannten Familie bekannt, die in der obern Kreide ihren Höhepunkt erreicht, während in dieser Formation erst das Auftreten der beiden andern Familien beginnt. Fossile Copepoden sind noch nicht bekannt. Die Ostracoden erreichen schon in der cambrischeu und silurischen Zeit eine solche Körpergröße, daß sie wohl als ein im Niedergang begriffener Krusterzweig auf- zufassen sind ; die Leperditien sind ausschließlich, die Cypridiniden vorwiegend paläozoisch; auch die übrigen 4 fossilen Familien: Polycopidae, Cytherellidae, Cytheridae, Cypridae beginnen im Carbon oder selbst Silur. Das fossile Vorkom- men von Cladocereu ist zweifelhaft. Von Branchiopodiden nimmt Verf. nur die Gattungen Branchipodites, Estheria^ Leaia und Estheriella an. Das Genus Nebalia hat eine große Zahl fossiler Verwandten, besonders aus der paläozoischen Zeit, z. Th. jedoch problematischer Natur [cfr. Bericht für 1884 U p 62]. Die Iso- poden, von denen etwa nur 25 sp. bekannt sind, reihen sich mit Ausnahme von Urda und der problematischen paläozoischen Arthropleuriden leicht in die Aegiden, Sphaeromiden, Bopyriden und Oniscidenein. Fossile Amphipoden sind sehr spärlich; die tertiären Arten sind den recenten enge verwandt; mesozoische Formen kennt man gar nicht und bei den paläozoischen Überresten ist die Her- gehörigkeit meist vollkommen unsicher. Von den Thoracostraca haben nur die 3. Crustacea. C. Paläontologie. 59 Stomatopoden und Decapoden Fossilien geliefert. Die ersten sind selten und ihr ältester, nicht ganz sicherer Vertreter gehört der Kohle an. Die Macruren begin- ginnen im Devon, die Brachyuren in der Kreide; die ersteren entwickeln im Jura und in der unteren Kreide, die letzteren erst imEocän einen größeren Formenreich- thum; während von jenen einigeFamilienihrenHöhepunkt gegenwärtig überschritten haben, erreichen diese ihn in der Jetztzeit. Alle mesozoischen Macruren sind marin und erst im jüngeren Tertiär finden sich auch Spuren von Süßwasserbe- wohnern. Aus dem lithographischen Schiefer des fränkischen Jura sind Phyllo- somen bekannt, die wahrscheinlich zu Palinumia und Eryon gehören. Über das früheste Auftreten der Anomuren lassen sich sichere Daten nicht feststellen. — Neben allen Ordnungen laufen Formen her, deren Zugehörigkeit mehr oder weniger zweifelhaft ist. Jones & Kirkby behandeln das Genus Kirhbya, erkennen davon 18 sp. und 3 var. an und geben Abbildungen und Beschreibungen zu folgenden Sp.; permiana Jones, tmihonata Eichw., oblonga J. & K., anectens i . & K. (mit var. bipartita), plicata J. & K., spiralis J. & K., spinosa J. & K., costata MCoy (mit var. moo- reana), scotwaJ. & K., rtpida J . & K., urei 3 . — Unter den Silurischen, Devo- nischen und Carbonischen Fossilien des Eureka-Districtes führt Walcott auchSp. von Leperditia und Beyrichia auf. Seguenza (') setzt seine Bearbeitung der Ostracoden desQuaternärs von Rizzolo fort [vergl. Bericht f. 1884 II p 63] ; er beschreibt Loxoconcha sinensis Bdy. und 4 n. sp., Xesioleberis depressa G. 0. S., piroducia S., intermedia Bdy., margaritea Bdy., aurantia Brd., lahiata B. & R., curia Bdy.? und 2 n. sp., 1 n. v., Cythe- rura inversa S. und 3 n. sp., Cytkeropteron punctatum Bdy., intermediutn Bdy., gradatum Bosq., bovettense S., Bythocythere 1 n., Cytherideis subulata Bdy., teres Bdy., gracilis Reuß, subspiralis B. C. & R. und 3 n. sp., Sclerochilus In., Pay-a- doxosioma flexuosum Bdy., ensiforme Bdy., hibernicum Bdy. und 2 n. sp., 1 n. v. , Polycope orbicularis G. 0. S. Vine zählt aus den »Skelly Gate Shales« 9 und aus den »Upper Carboniferous Shales« von Northumberland 8 Ostracoden auf. Zittel (^] beschreibt jurassische Lepaditen (1 n. g., 1 n. sp.) Dames spricht über die bekannten Arten von Loricida, bildet L. syriaca D., pulchella Sowerby, laevissima Zittel und 1 n. sp. ab und gründet auf die letzten beiden Arten ein neues Genus. Hilgendorf (^) macht eine vorläufige Mittheilung über Squilliden-Larven aus dem Fischmergel (Turon) vom Libanon. Packard (^j rechnet AcanthottUon M. & W. zu den Syncaridae, der niedersten Familie der Thoracostraken und einem Bindeglied zwischen diesen und den Amphi- poden, welch letztern sie aber ferner stehen als den Schizopoden ; mit den Iso- poden hat A. nur oberflächliche Ähnlichkeit. Auf Gampsonyx und Palaeocaris gründet Packard (•^) die Gruppe der Gampsonychidae, welche die Syncariden mit den Schizopoden verbindet ; von den letztern unterscheidet sie sich durch völligen Mangel des Rückenschildes. Packard (^) gründet auf Anthrapalaemon die Familie der Anthracaridae, die sich von den Eryoniden durch die geringe Größe der vor- dem Brustfüße unterscheiden ; sie sind die Vorfahren der letztern und vielleicht auch der Astaciden. Pelseneer (^) bespricht die Systematik der fossilen Astaciden und ihr Verhältnis zu den recenten und beschreibt 1 n. sp. Faxon (') gibt p 156 eine Übersicht über die fossilen Astaciden. Aus der Kreide und dem Tertiär Ägyptens beschreibt NÖtling folgende Sp. : RaninaGfv. marestianaK.önig, Palaeocarpilius macroc/ieilusDesxa., Callianassa nilotica Fraas und 5 n. sp. Archaeolepas u. für Pollicipes redietibac/ieri O'pTp., royeriJjOV., quenstedti Amm.\ Zittel (-)• gQ Arthropoda. Bythocythere reticulum n. Quaternär v. Rizzolo; Seguenza ('; p 250 Fig. CallJatiassa Jraasi n.j mokattamensis n. (= prisca Fraas non M. E.), longa n., trans- versoplicata n. Ägypten; NÖtling p 492-497 Figg. Cytherideis gracülima n., elegans n., mucronata n. Quaternär v. Rizzolo; Seguenza ') p 296-297, p 22 Figg. Cytheropteron Simplex n., oblongum n., rhomboideuni n. Quaternär v. Rizzolo ; Se- guenza (i) p 207-208, 215 Figg. Cytherura consanguinea n., microptera n., hiproducta n. Quaternär v. Rizzolo; Se- guenza (^j p 160-162, 205 Figg. Eryon cahadosii n. Oberer Lias, Calvados ; Moriere. Hepatiscus schweinfurthi n. Ägypten ; NÖtling p 4SS Figg. Hoploparia (p. p. zu Homarus) benedeni n. Grünsand von Grandpre ; Pelsenoor (^) p 54 Figg. — muncki n. Braune Kreide von Ciply ; Pelseneer (^) p 44 Fig. Loriciila laevissima n. Oberer Kreidemergel von Dülmen; Zittel (^] p 589. Loriculina n. noetlingi n. Senon des Libanon ; Dames p 152 Fig. Loxoconcha tenuis n., saccata n., seminulum n., tizzolensis n. Quaternär von Rizzolo; Seguenza (i) p S9-91, 116 Figg. Oncoparia Bosquet zu Hoploparia: Pelseneer l^). Pagurus [Clibanariusfj dubius n. Ägypten ; NÖtling p 497 Fig. Paradoxostoma obtusatimm., crassvmn., abbreviatimi G. 0. S. var. gibbum n. Quater- när von Rizzolo; Seguenza (') p 24, 32-33 Figg. Pseudotelphusa Capellini (speciosa) zu TelpAusa gezogen: Mercanti. Sclerochilus insignis n. Quaternär von Rizzolo; Seguenza (^) p 23 Fig. Xesloleberis saccata n., compressa n., gramdosa Bdy. var. reticulata n. Quaternär von Rizzolo; Seguenza (^j p 157-160. 4. Poecilopoda. Trilobitae. (Referent: Dr. Paul Mayer in Neapel.) Brooks, W. K., & A. T. Bruce, Abstract of Researches on the Embryology of Limulus poly- phemus. in : J. Hopkins Univ. Circ. Vol. 5 p 2 — 4 Fig. [63] *Gotch, Frc, & Jos. P. Laws, On the Blood oi Limulus iwlyphemus. in: Rep. 54. Meet. Brit. Ass. Adv. Sc. p 774—776. Halliburton, W. D., On the Occurence of Chitin as a Constituent of the Cartilages of Li- mulus and Sepia, in: Q. Journ. Micr. Sc. (2) Vol. 25 p 173—181. [61] Kingsley, J. S., Notes on the Embryology of Limulus. ibid. p 521 — 576 T 37 — 39. [61, 63] *Linnarsson, G., De undre Paradoxideslagren vid Andrarum. in: Sveriges Geol. Under- sökning Ser. C. No. 54 1883 p 1—48 T 1—4. Matthew, G. F., On the probable occurrence of the Great Welsh Paradoxides, P. Davidis in America, in : Amer. Journ. Sc. Vol. 30 p 72 — 73. [64] Osborn, H. L., The Metamorphosis oi Limulus polyphemus. in: J. Hopkins Univ. Circ. Vol. 5 p 2. [63] Packard, A. S., 1. Types of Carboniferous Xiphosura new to North America, in: Amer. Natural. Vol. 19 p 291—294. [64] , 2. On the Embryology of Limulus polyphemus. III. in: Proc. Amer. Phil. Soc. Vol. 22 p 268—272 1 Taf.; auch in: Amer. Natural. Vol. 19 p 722—727 T 24. [63] Schmidt, Fr,, Revision der ostbaltischen silurischen Trilobiten. 2. Abth. Acidaspiden und Lichiden. in: Mem. Acad. Petersbourg (7) Tome 33 Nr. 1 127 pgg. 6 Taf. [64] *Törnquist, 8. L., Undersökningar öfver Siljansomrädets Trilobitfauna. in: Lunds Univ Ärskr. 20. Bd. p 1— 1U4 T 1—3. 4. Poecilopoda. Trilobitae. gl Walcott, Ch. D., Paleozoic Notes; New Genus of Cambrian Trilobites, 3fesonacts. in: Amer. Journ. Sc. Yol. 29 p 328—330 2 Figg. [64] Williams, H. Shaler, Notice of a new Limuloid Crustacean from the Devonian. ibid. Vol. 30 p 45—49 3 Figg. [64] *Woodward, IL, 1. On the discovery of Trilobites in the Culm-shales of Devonshire. in: Geol. Mag. 1884 p 534—545 1 Taf. * , 2. Monograph of British Carboniferous Trilobites. Schluß, in : Paläont. Soc. 1884. Anatomie etc. von Limuhis , vergl, oben p 5, 6 Lankester (3) und Lankester, Benham & Beck. Coxaldrüse, vergl. oben p 6 Gulland. Auge, veigl. oben p 2 Carriere. Nach Halliburton besteht das Entosternit von Unmlus hauptsächlich aus einem dem Chondrin ähnlichen Körper mit lo/o Chitin; Keratin und Elastin fehlen. Auch die Leber von L. enthält Chitin, es bleibt aber noch festzustellen, ob es in den Leberzellen oder im Bindegewebe seinen Sitz hat. Howell (Titel s. oben pH) macht Angaben über das Blut von Limulus. Es enthält 4 bei verschiedenen Temperaturen coagulirbare Albumine, welche dem Paraglobulin nahe zu stehen scheinen. Die blaue Farbe, welche das Blut an der Luft annimmt [vergl. Bericht f. 1881 II p 3], rührt von einem Kupferalbuminate her, das aber wohl kaum der Respiration dienen dürfte. Das Coagulum, welches gleichzeitig entsteht, rührt einzig und allein von den Blutkörperchen her, die zu einem Syncytium zusammentreten. Hierher auch *6otch & Laws. Kingsley liefert Beiträge zur Embryologie von Limulus polyphemus. Künst- liche Befruchtung gelang ihm ebenso wenig wie H. L. Osborn, wenigstens ent- wickelten sich die Eier hinterher nur äußerst langsam und zeigten Erscheinungen, die Verf. nicht als normal betrachten möchte. Die Q legen ihre Eier in Nestern theils oberhalb der Fluthgrenze, theils zwischen ihr und der Ebbegrenze ab. Sie sind kugelig oder oval; ihre Farbe variirt sehr. Das Chorion besteht aus etwa 20 Schichten, ist sehr zäh, anscheinend ohne Poren oder IVIicropyle. Eier und Embryonen sind sehr zählebig und vertragen sogar mehrwöchentliches Verweilen in Süßwasser. — Methode : Allmähliche Härtung in Alcohol wenigstens ebenso- gut wie Behandlung mit Sublimat etc. , dagegen Abtödtung mit heißem Wasser nicht zu empfehlen. Chorion meist mitgeschnitten, nachträgliche Färbung der Schnitte mit Hämatoxylin. Für Oberflächenbilder Conservirung mit Osmium. — Das jüngste Stadium zeigte bereits nicht nur das Blastoderm, sondern auch einen kreisförmigen Keimstreif und darin eine birnförmige Vertiefung, welche Verf. als Blastoporus deutet, indem er den Dotter als ausschließliches Entoderm be- trachtet und in ihm deutliche Zellen mit Kern und Wandung, durchaus aber keine freien Kerne findet. Ganz so wie bei Peripatus soll der Blastoporus sich in der Mitte schließen (Verf. hat die entscheidenden Stadien nicht beobachtet] , während die hintere Partie zum After, die vordere zum Munde wird ; letzterer liegt an- fänglich vor dem 1. Extremitätenpaare, rückt aber allmählich hinter dasselbe und verlängert sich schon früh nach innen zum Vorderdarm. Das Mesoderm ist von Hause aus unpaar, zerfällt aber bald, theilweise wohl in Folge von Wande- rungen seiner Zellen , in 2 Längsbänder , die sich auch in die Extremitäten er- strecken; zu dieser Zeit ist es in der Mundgegend noch unpaar. Die Leibes- höhle entsteht erst später, indem Spalten in jedem Mesodermsegmente auftreten, sich zu je einer rechten und linken Segraenthöhle vereinigen und nun sich auch in die Extremitäten fortsetzen. Darauf wächst das Mesoderm dorsalwärts fort, bis sich die beiden nur eine Zellschicht dicken Platten in der dorsalen Mittellinie treffen. Auf nicht näher bekannt gewordene Weise bildet sich hier ein solider 62 Arthropoda. Längsstrang von Zellen, die vielleicht theilweise aus dem Dotter stammen, welcher in dieser Gegend sehr viel Kerne und kleine Zellen enthält. Der Strang weitet und höhlt sich aus , und die in sein Lumen hinein knospenden Mesodermzellen werden zu Blutkörperchen. Dieser Proceß der Entstehung des Herzens geht in der Richtung von vorn nach hinten vor sich ; schließlich ist die Herzwand nur 1 Zelle dick ; ihre Musculatur erhält sie erst nach der Geburt des Embryo. Un- gefähr gleichzeitig mit der Anlage des Herzens tritt in der dorsalen Mittellinie auch eine Verdickung des Ectoderms auf und liefert wahrscheinlich später den Dorsalkiel. — Das Mesoderm wächst sowohl ventral als auch lateral in den Dotter hinein und zerlegt ihn in eine centrale Masse und 6 Paar laterale Lappen; zu- gleich geht aus ihm die Musculatur hervor. Das 6. Extremitätenpaar und das Metastoma (Griffel, Chilaria) gehören einem und demselben Dottersegmente an. Das früheste Stadium der Segmentalorgane (Coxaldrtlsen) stellt 2 Mesoderm- ballen im 5. Segmente dar, die erst nachträglich zur Basis des 5. Beines hin wachsen und dort ausmünden. Cilien besitzt das Rohr nicht ; mit seinem inneren Ende scheint es sich in die Leibeshöhle zu Öffnen und erst später sich zu schließen [vergl. oben p 7 Lankester]. Von den Abdominalgliedmaßen ent- stehen zuerst das Operculum und der 1. Kiemenfuß, darauf auch das 2.-5., und zwar jeder von ihnen zunächst als einfacher blattähnlicher Auswuchs ohne Spur von Zweiästigkeit. Die Kiemenblättchen treten um so später auf, je mehr sie proximal liegen. Die Gliedmaßen des Cephalothorax erscheinen alle gleichzeitig und als einfache Auswüchse. Nervensystem. Der Bauchstrang ist von Hause aus eine paare Verdickung des Epiblastes ; eine Furche auf der Oberfläche des Embryos tritt dabei nicht auf; die Ablösung der Nervenstränge vom Ectoderm geschieht von vorn nach hinten , wobei aber die Längscommissu- ren den Ganglien und in letzteren der mediane Theil den lateralen vorauseilen. Die Quercommissuren sind bestimmt nicht, die Längscommissuren dagegen wahr- scheinlich Einstülpungen des Ectoderms. Sämmtliche 8 Ganglien des Embryos sind zunächst postoral, und zwar versorgen 6 die 6 Beine, 1 das Operculum und 1 den 1. Kiemenfuß, sodaß also die Chilaria kein besonderes Ganglion erhalten. Später, wenn der Mund nach hinten rückt, geht das 1. Ganglienpaar in der Schlundcommissur auf. Die Nerven zu den Gliedmaßen entstehen als Auswüchse der betreffenden Ganglien. Die Arterie, welche den Bauchstrang einhüllt, bildet sich aus 2 seitlichen um ihn herumwachsenden und mit einander ver- schmelzenden Mesodermpartien. Das Gehirn ist anfänglich vom Bauchstrange getrennt. Die Anlagen der zusammengesetzten Augen zeigen sich schon, wenn der Mesoblast noch nicht so weit lateral vorgedrungen ist, in der Höhe zwischen dem 4. und 5. Beinpaare. Die Segmentation des Körpers erstreckt sich nie auf das Ectoderm und auch zu keiner Zeit des Embryonallebens sind die Seg- mente mit einander beweglich verbunden ; die einzigen Gelenke sind zwischen Cephalothorax und Abdomen und diesem und dem Schwanzstachel. Embryonal- häute. Schon sehr früh scheiden die Blastodermzellen eine gefelderte Cuticula ab, welche Packard fälschlich als Amnion bezeichnet hat. Wenn die Glied- maßen sich anlegen, so hat sie bereits die Dicke des Blastoderms erreicht und hebt sich alsdann von ihm ab; bald darauf, wahrscheinlich in Folge von Wasser- aufnahme in's Innere des Eies, platzt das Chorion und von da ab fungirt die Cu- ticula als ein solches, dehnt sich auch mit dem wachsenden Embryo bis fast zum doppelten Durchmesser des Eies aus. Letzterer häutet sich unter Bewegungen seiner Gliedmaßen noch während des Eilebens zum 2. Male, wobei die Fetzen dieser 2. Cuticula im Ei verbleiben. Die 3. Häutung geschieht im Sande 5-10 Wochen nach der Geburt \mö erst jetzt zeigt sich im Mitteldarme, welcher aus der centralen Dottermasse hervorgeht, das Lumen ; es entsteht dadurch, daß 4. Poecilopoda. Trilobitae. 63 die peripherischen Dotterzelleii die centralen anffressen. Der Ösophagns ver- einigt sich zu derselben Zeit mit dem Mesenteron. Die Leber geht aus den seit- lichen Dottermassen hervor und ihr Zerfall in Lappen ist auf die mesodermalen Septa zurückzuführen. — Phylogenetisches. Verf. schließt sich hier im We- sentlichen Lankester an , hebt jedoch die Priorität van Beneden's hervor und hat auch für die Umwandlung der Kiemen von Limulus in die Lungen der Arachniden eine einfachere Hypothese, als die von Mac Leod und die ältere von Lankester. Im Übrigen vergleicht Verf. die Hauptphasen aus der Ontogenese von L. mit der von Crustaceen einerseits und von Arachniden andererseits und findet größere Ähnlichkeit mit der letzteren. Den Rückenschild von L. betrachtet er als »the greatly expanded upper portion of the head« , nicht aber als die Verschmel- zung der Tergite, welche den 6 Sterniten entsprechen würden ; dies hebt auch die Schwierigkeit, daß die zusammengesetzten Augen bei manchen Individuen halb über dem 4., halb über dem 5. Mesoderm Segmente liegen. In gleicher Weise hat man auch den Rückenschild und die Stellung der Augen bei den Araneiden zu deuten. Die Trilobiteu sind wohl kaum so nahe mitZ. verwandt, wie man vielfach annimmt. Im Übrigen vergl. auch oben p 5. Packard (^) beschreibt ein Stadium aus der Ontogenese von Limulus. Das sogen. Amnion ist von Kingsley mit Recht als Cuticula erkannt worden. Ento- dermzellen konnten im Dotter nicht wahrgenommen werden und lagen in dünner Schicht direct unter dem dorsalen Ectoderm , Scheitellappen sind nicht ent- wickelt; hierin gleicht also L. den Crustaceen. Überhaupt haben die Poecilo- poden wohl nie in genetischer Beziehung zu den Tracheateu gestanden. Die älte- sten Arthropoden waren Trilobiten. Kingsley wendet dagegen in einer Schluß- bemerkung kurz ein, daß P. 's Abbildungen eine andere Deutung erfahren müssen und daß die Crustaceen wohl Scheitellappen haben. Osborn macht einige kurze Angaben über die »Metamorphose« von Limuhs, d. h. über Furchung etc. — Gleichfalls in einer vorläufigen Mittheilung verbrei- ten sich Brooks & Bruce über die gesammte Ontogenese, ohne jedoch auf Kingsley Rücksicht zu nehmen. Das reife unbefruchtete Ei besteht aus homogenem Dotter und einer ihm aufsitzenden Kappe von Protoplasma. 24 Stundennach der Befruch- tung erstrecken sich von der Kappe aus Pseudopodien in den Dotter hinein und th eilen ihn in Dotterballen, aber erst einige Tage später sind in der Kappe 1 oder 2 große Kerne sichtbar. Am 5. Tage erhält auch jeder von den mittlerweile zahlreicher gewordenen Ballen einen sehr kleinen Kern , dessen Ursprung un- bekannt blieb ; zugleich verschwindet die Kappe gänzlich. Nach Vollendung dieser Art von Furch ung gestalten sich die oberflächlichen Dotterzellen unter Verlust des Dotters zum Blastoderme, das sofort eine Cuticula (»Protoderm«) abscheidet. Ein Theil desselben bildet sich zu einem mehrschichtigen Cumulus pri- mitivus, den auch Osborn erwähnt, um, ohne daß aber die Verfif. über die Herkunft der tieferen Zellschichten ins Klare kommen konnten. Eine mediane Einstülpung liefert das Mesoderm, welches aber zum Theile auch vom Dotter abzustammen scheint. Der Mund legt sich etwas vor dem 1 .Beinpaare an und wandert später mehr nach hinten. Mittel- und Enddarm nebst After bilden sich erst in der Larve, während im Embryo nur der blind endende Ösophagus und eine von Mesoderm umhüllte mächtige Dottermasse vorhanden ist, aus der sowohl der Mitteldarm als auch die Leber hervorgehen. Das Oberschlundganglion entsteht theils aus 2 Einstülpungen des Ectoderms , theils aus dem Vorderende des Bauchstranges ; die Quercommissur zwischen dem 1 . Ganglienpaare des letzteren liegt vor dem Munde; das 7. »pair of appendagestc besitzt ein eigenes Ganglion. Die Seiten- augen gehen direct aus Ectodermzellen hervor , während der nervöse Theil der Mittelaugen vom Ectoderm der Bauchseite herrührt. Im Ganzen stimmt also die ß4 Arthropoda. Entwickelung von Z. am meisten mit der dei* Spinnen überein. [Eingehendes Referat nach Erscheinen der ausführlichen Arbeit.] Zittel bringt in seiner Paläontologie (Titel s. oben p 15) die Trilobiten zu den Entomostraken, welchen er die Merostomata (Xiphosura -]- Gigantostraca) und Ma- lacostraken entgegenstellt. Von den Trilobiten gibt er p 568-636 eine Dar- stellung , welche auch die Anatomie umfaßt. »Die fundamentale Verschiedenheit der Füße des Thorax und Pygidiums kann als das wichtigste Unterscheidungs- merkmal zwischen Merostomata und Trilobiten gelten und gestattet keine Ver- einigung der beiden Crustaceen-Grppen« (p 589). Die Classification (15 Fami- lien) geschieht im Wesentlichen nach Salter und Bai'rande. — Die Merosto- mata werden in ähnlicher Weise p 636-655 abgehandelt. Packard (^) beschreibt mehrere neue Poecilopoden aus der Steinkohle. Bei Ci/clus americanus n. fand er Spuren von 4 oder 5 Paar Extremitäten; bei Eu- proops Danae waren die 6 Beinpaare mit Ausnahme des 1 . weniger gut erhaltenen völlig gleich denen eines dem Ausschlüpfen nahen Limulus. «Danach würde L. erst ein Trilobiten- und dann ein Belinurusstadium durchlaufen«. Für Cydus schlägt Verf. die Bildung einer besonderen Familie, Cyclidae, vor. Ein auf Newfoundland mit Agnostusdirtexi gefundener Paradoxides ist nach Mat- thew wahrscheinlich ^\q Axt Davidis, welche bisher aus America nicht bekannt war. Schmidt behandelt in der Fortsetzung seiner ostbaltischen silurischen Trilo- biten [vergl. Bericht f. 1882 II p 64] die Acidaspiden und Lichiden, und zwar: AcidaspisMMXoh. (2 n.) ; Lichas ['d\, 10 n.) mit den »Gruppen« Arges Goldf. (1 n.), Leiolichas u. (1), Plati/me(opus Aug. (3, 1 n.), Meiopias Kichw . (5, 1 n.), Hoplolichas Dames (5, 3 n.), ConoUchas Dames (3), Homolichas n. (5, 1 n.), On~ cholichas n. (2) und eine Ergänzungsgruppe mit unvollständigen Dorsalfurchen (6, 3 n.). Von L. sagt Verf. : »Die Zusammengehörigkeit von Kopf und Pygi- dium bei den einzelnen Arten konnte in keinem einzigen Fall durch directe Beob- achtung festgestellt werden. Sie beruhte durchweg auf Combinationen«. Das Hypostoma war bei L. mit dem Schnauzenschilde beweglich verbunden. Alle be- sprochenen Arten sind abgebildet. Nene Gattungen nnd Arten. Acidaspis emarginata n. 1 Ex. Insel Mohn; Schmidt p 2 Fig. — Kuchersiana n. 2 Ex. Kuckers ; id. p 4 Figg. Belinurns Lacoi n. Mazon Creek, Morris, 111. ; Packard (^) p 292. Cyclus americanus n. Mazon Creek, Morris, 111. ; Packard (') p 293. Dipeltis n. g. Cyclidarum — diplodiscus n. Mazon Creek, Morris, 111. ; Packard (') p 293. Lichas [Arges] wesetibergensis n. Wesenberg; p 44 Figg., [Platymetopus] Holmin. ibid. und Raggafer; p 54 Figg., [Metojnus] Kuckersiana n. Kuckers; p 67 Figg., [Hoplolichas] longispina n. 1 Ex. Tolks ; p 75 Fig., [H.) Plautini n. Gostilizy u. s. w. ; p 67 Figg., [H.]furcifer n. ibid. ; p SO Figg., [Homolichas] Pahleni n. Kappel und Kuckers; p 97 Figg., [L.] St. Mathiae u. St. Mathias etc.; p 115 Figg., docens n. 1 Ex, Taps; p 121 Figg., hamata n. Lyckholm etc.; p 124 Figg.; Schmidt. Mesonacis n. gen. Zwischen Paradoxides und Olenellus , 15. Segment mit langem Rückenstachel — vermontana n. Georgia (Vermont) ; Waicott. Prestwichia Eriensis n. l Ex. Le Boeuf (Erie County, Pennsylv.) ; Williams. 5, Protracheata. Tracheata im Allgemeinen. 65 5. Protracheata. Tracheata im Allgemeinen. (Referent : Dr. P a u 1 M a y e r in Neapel. ) Gaffi'On, E., Beiträge zur Anatomie und Histologie von Per;jj«^Ms. in: Z. Beiträge v. A. Schneider 1. Bd. p 145—103 T 21—23. [65] Limbeck, Rud. v., Zur Kenntnis des Baues der Insectenmuskeln. in : Sitz. Ber. Akad. Wien 91. Bd. 3. Abth. p 322—349 1 Taf. [66] Sedgwick, Ad., 1. The Development of Pt'rjjjw/ws co^eMsw. Parti, in: Q. Jovirn. Micr. Sc. (2) Vol. 25 p 449—460 T 31 u. 32. [65, 67] , 2. idem. in: Proc. R. Soc. London Vol. 38 p 354—361. [Vorl. Mitth. zu Nr. 1.] Gaffron stimmt der Kennelschen Anschauung vom Receptaculum ovorum [vergl. Bericht f. 1884 II p 70] nicht bei, weil die Zellen in ihm keine Eier, sondern »vergrößerte Peritoneal- oder Bindegewebszellen« seien. Der lange Drüsenschlauch beim (^ öffnet sich nicht, wie es in der vorläufigen Mittheilung liieß, dorsal, son- dern ventral vom After. An allen Beinen des q^ und ^ findet sich auf der Ober- seite dicht vor dem Stiele des Krallenapparates ein bohnenförmiger Körper (wahr- scheinlich ein vorstülpbares Sinnesorgan) aus modificirten Epidermiszellen und mit Rückziehmuskeln und Nerven. Im Übrigen vergl. Bericht f. 1884 II p 69, Auge von Peripatus, vergl. oben p 2 Carriere (') . Sedgwick (^) behandelt die Entwicklung von P. capensis und Balfouri n. sp., die er theils in der Capstadt theils in England an lebendem Materiale studirte. Die Embryonen von P. capensis bleiben 13 Monate im Uterus und kommen in einer Länge von 10-15 mm, die von Balfouri in etwa der halben Länge zur Welt. Die Beschreibung der Genitalien, wie sie Moseley gegeben hat, ist correct; nur sind die »Testes« in Wirklichkeit Samenblasen und die »Prostatae« die eigent- lichen Hoden. Aus den Wandzellen der letzteren gehen die Spermatozoeu hervor, werden in den Vasa deferentia bündelweise mit einer structurlosen Hülle beklei- det und als kleine weiße Spermatophoren vom (^ überall auf dem Körper des § oder auch des (^ selber deponirt. Wie sie alsdann in die Vagina und durch die Uteri voll Embryonen hindurch in die Ovarien gelangen, ist unbekannt; die Samenfäden zeigen übrigens »a certain amount of vibratory movement«. Die Be- fruchtung findet jedenfalls in den Ovarien statt. Die Eier sind Abkömmlinge der Wand derselben; ihre Wanderung den Uterus abwärts geschieht in Folge peristal- tischer Contractionen der Wandungen; Cilien hat Verf. weder hier noch irgendwo im Körper von capensis beobachtet, also auch nicht in den Segmentalorganen [vergl. Bericht f. 1884 II p 09 und f. 1883 II p 55 u. 57]. Furchung. Das reife Ei hat einen Längsdurchmesser von 0,4 mm und wird von einer structurlosen, sehr durchlässigen Membran umhüllt, die bis zur Geburt bestehen bleibt. Zwischen ihr und dem Embryo befindet sich stets ein Raum voll Flüssigkeit. Das helle Ei- plasma besitzt am dorsalen (animalen) Pole einen dunklen Fleck und zugleich eine Einbuchtung ; in jenem liegt der Kern, in dieser 2 Polkörperchen, über deren Herkunft und Schicksal Verf. nichts ermittelt hat. Die 1 . Furche ist transversal, die 2. vertical und longitudinal, die 3. horizontal; die beiden ersten liefern 4 gleiche Zellen mit je einem Antheil des dunklen Fleckes, während die dritte 4 kleinere dunkle Zellen (Ectoderm) und 4 größere helle (Entoderm) schafft. Am Ende der Furchung bildet das Ectoderm eine oberflächliche Schicht Oeckiger Zellen un- gefähr in der Mitte der Längsachse des Eies, während die Entodermzellen, mit langen Ausläufern versehen, im ganzen Ei unregelmäßig zerstreut sind, so daß man glauben könnte, es mit abgestorbenen oder abnormen Eiern zu thun zu haben. Dann jedoch wandern die Entodermzellen amöboid zum Centrum hin und sammeln sich Zool. Jahresbericht. 1S85. II. 5 ßg Arthropoda. dort zu einem soliden Ballen an, welchem das Ectoderm anfänglich wie eine Mütze aufsitzt. Allmählich umwächst letzteres jedoch ersteres bis auf einen Blastoporus, und so kommt eine solide Gastrula zu Stande, die sich nachträglich aushöhlt. Weitere Entwicklung. Der Blastoporus schließt sich nie, sondern wird, wie schon vonBalfour angegeben [gegen Kennel; vergl. Bericht f. 1884 II p 73] zum Mund + After, die aber durch Einstülpungen des Ectoderms später nach innen verlegt werden und alsdann die Öffnungen des Mitteldarmes gegen Vorder- resp. Hinterdarm darstellen. Am hinteren Ende des Blastoporus entsteht im Stadium A, wohl durch Vermehrung von Zellen unbestimmter Herkunft, der Primitivstreif, und von diesem aus wächst nun, indem der Embryo sich gleichzeitig in die Länge streckt, das Mesoderm in 2 ventrolateralen Bändern rechts und links vom Blasto- porus nach vorn. Die Segmentation des Mesoderms, wobei die Höhlen in den Seg- menten Theile der Leibeshöhle sind, geschieht in der Richtung von vorn nach hinten. Im Stadium B tritt die Primitivfurche auf; im Stadium C beginnt das Hinterende des Embryo sich nach vorn zu krümmen, und dieser Proceß dauert fort, bis der Embryo schließlich einen völligen Püng bildet. Besonders scharf ist die Beugung am 8. Segmente, wo auf der Rückenseite lange Zeit hindurch die Haut höckerartig hervorragt. Im Stadium D fangen die Extremitäten als Aus- wüchse der Segmente an hervorzusprossen, zuerst die Antennen, dann allmählich die Kiefer, Mundpapillen, 17 Beinpaare und zuletzt die rudimentären Analpapillen. Die Augen sind ectodermale Gruben in den Seitentheilen der Präoralloben (des künftigen Gehirnes), die sich später schließen; hierbei wird die Innenwand der Einstülpung zur Retina und der Hohlraum zur Linse, falls diese überhaupt existirt und nicht nur ein Kunstproduct ist. Ferner zeigt sich am Schlüsse von Stadium D die Anlage der Lippenfalte, welche später Kiefer und primäre Mundhöhle um- wallt, und rückt der Anus an das Hinterende des Körpers. In E schließen sich die Augengruben, entstehen dagegen ventrale Einstülpungen in den Präorallappen, die sich aber später gleichfalls ganz oder nahezu schließen [Bedeutung ?] . Auch stülpt sich im 3. Segmente die Haut auf der Spitze der Oralpapillen ein und liefert bei weiterem Wachsthum nach innen die Schleimdrüsen, ferner tritt eine Grube hinter jeder Oralpapille auf. welche in die Höhlung des 3. Segments als in die zukünftige Speicheldrüse führt. Letztere sind also die Nephridien des 3. Seg- mentes; ihre Öffnungen werden durch die Lippenbildung in die definitive Mund- höhle hinein verlegt. Im Stadium G. ist der Embryo äußerst durchsichtig gewor- den; sämmtiiche Extremitäten und auch der Rumpf sind geringelt, die Haut zeigt die Anlagen der Sinnespapillen ; das 4. und 5. Nephridium zeichnen sich durch ihre Größe aus und sind gleich den übrigen durch die Haut hindurch sichtbar. Phylogenese von Peripatus, vergi. oben p 5 Kingsley ("^) . V. Limbeck untersuchte ohne jegliche Berücksichtigung der einschlägigen zoo- logischen Literatur [z. B. Ciaccio ; vergl. Bericht f. 1882 II p 126] den fei- neren Bau der quergestreiften Muskeln von Arachniden, Myriopoden und Hexapoden auf Schnitten, die theils gefrorenen, theils vergoldeten und in Paraffin eingebetteten Muskeln entstammten. Die Flügelmuskeln der Hexapoden sind da- durch characterisirt, daß »immer eine Gruppe von Muskelfibrillen durch Systeme von Tracheenverzweigungen und durch eine reichhaltige Zwischensubstanz zu- sammengehalten wird und so, obwohl sie kein Sarcolemm und keine Muskelkerne besitzen, dem Untersucher eine wahre, denjenigen der Wirbelthiere ähnliche Muskelfaser vortäuschen«. Dagegen sind die Hüftmuskeln von Dytisciis durch- aus anders gebaut; es sind »Cylinder mit axialem Strange nicht contractiler Sub- stanz, welche sich allseitig in äußerst dünne Längsplatten fortsetzt, die, im We- sentlichen radial gestellt, sich bis an den Mantel des Cylinders erstrecken. Der Abstand zwischen je 2 dieser Kittsubstanzplatten ist gleich dem Durchmesser der 6. Arachnidae. 67 Primitivfibnllen, welche den spaltförmigen Raum zwischen je 2 Kittplatten in radial gestellten Reihen ausfüllen«. Jedoch ist dieser lamellöse Bau nicht allge- mein vorhanden. Bei Spinnen haben die Thoraxmuskeln Kerne, weniger Kitt- substanz, wahrscheinlich ein Sarcolemm und keine Tracheen. Peripatus Balfouriu. Cap der Guten Hoffnung; Sedgwick (') p 450. 6. Arachnidae. (Referenten: für A. Anatomie etc.: Dr. Paul Mayer in Neapel; für B. — D. Systematik, Biologie etc.: Dr. Ferd. Kar seh in Berlin.) A. Bertkau, Phil., 1. Über den Saisondimorphismus und einige andere Lebenserscheinungen bei Spinnen, in: Z. Anzeiger 8. Jahrg. p 459 — 464. [68] , 2. Bemerkungen zu Schimkewitsch's Notiz »Sur un organe des sens des Araignees« in: Zool. Anz. Nr. 201 p4G4. in: Z. Anzeiger 8. Jahrg. p 537—538. [68] , 3. Entomologische Miscellen. in: Verh. Nat. Ver. Bonn 41. Jahrg. p 343 — 363 T 7. [68] , 4. Über die Coxaldrüsen. ibid. 42. Jahrg. Sitz. Ber. p 13—16. [68] Blochmann, F., Über directe Kerntheilung in der Embryonalhülle der Scorpione. in : Morph. Jahrb. 10. Bd. p 480—485 T 22. [68] Dahl, Fr., 1. Zur Anatomie der Araneen. in: Z. Anzeiger 8. Jahrg. p 241 — 243. [68] , 2. Analytische Bearbeitung der Spinnen Norddeutschlands mit einer anatomisch- biologischen Einleitung, in: Sehr. Nat. Ver. Kiel 5. Bd. 1883 p 13—86 T 1, 2. [68] Grassi, B., Intorno ad un nuovo aracnide artrogastro [Koenenia mirahilis) che crediamo rap- presentante d'un nuovo ordine (Microteliphonida). in : Natural. Sicil. Anno 4 p 127 — 133, 162 — 169. [Referat nach Erscheinen der ausführlichen Arbeit.] Krämer, P., Über Halarachne Halichoeri KWm.. in: Zeit. Naturw. Halle 58. Bd. p 46 — 74 T3. [68] Laboulbene, A., & P. Megnin, Memoire sur le Sphaerogyna ventricosa (Newport). in: Journ. Anat. Phys. Paris 21. Annee p 1—18 T 1. [71] Naiepa, Alfr., Die Anatomie der Tyroglyphen. 2. Abth. in: Sitz. Ber. Akad. Wien 92. ßd. p 116—167 3 Taf. Vorl. Mitth. dazu in: Anzeiger Akad. Wien p 135— f37. [69] Pelseneer, Paul, On the Coxal Glands of ii'/y^/aZe. in: Proc. Z. Soc. London p 3— 6 T2; auch in: Bull. Sc. Dep. Nord (2) 7./8. Annee p 101—105. [68] Schimkewitsch, Wlad., Sur un organe des sens des Araignees. in: Z. Anzeiger 8. Jahrg. p 464— 466. [68] Scudder, Sam. H., s. Zittel. Zittel, K. A., Handbuch der Paläontologie. 1. Abth. 9. Liefg. Myriopoda, Arachnoidea und Insecta bearbeitet von Sam. H. Scudder. p 721—831 F 894—1109. [71] Anatomie etc. der Scorpione, vergl. oben p 5, G Lankester {^) und Laiikester, Benham & Beck. Histologie von Arachniden, vergl. oben p 2 Leydig. Zelltheilung bei Arachniden, vergl. oben p 2 Carnoy (^). Cephalothorax und Augen der Araneiden, vergl. oben p 03 Kingsley. Auge der Arachniden, vergl. oben p 2 Carriere {'). 5* ßg Arthropoda. Dahl (') macht (gegen Bertkau) darauf aufmerksam, daß er bereits vor 2 Jahren [in (2) , wo eine kurze Darstellung des gesammten Körperbaues der Spinnen gegeben wird] auf die starke Entwicklung der Maxillardrüsen bei dem (^ von Epeira hin- gewiesen habe ; da nun dieses kaum Nahrung zu sich nehme und seine Maxilleu viel schwächer als die des Q seien, so werden die Drüsen wohl zur Einspeichelung des Spermas dienen [vergl. Bericht f. 1884 II p 78]. Ferner sind die Fasern am Eingänge des Schlundes nicht etwa starr, sondern quergestreifte Muskelfasern. Seine Beschreibung des Geruchsorganes [vergl. Bericht f. 1884 II p 76] hält Verf. aufrecht. Nach Schimkewitsch sind die von Dahl beschriebenen Falten am Metatarsus [vergl. Bericht f. 1884 II p 76] auf den meisten Gliedern der Beine und Taster bei (^ und 5 vieler Gattungen vorhanden und wahrscheinlich Chordotonalorgane. In der Epidermis dieser Stellen befinden sich Ganglienzellen, deren Verbindung mit dem Extremitätennerv aber nicht nachgewiesen und in denen auch keine Stäbchen gefunden wurden. Bertkau (^j sieht in diesen Falten, welche auch am Rumpfe vor- kommen und in ihrem Inneren als Nervenendorgan ein glänzendes Knöpfchen ber- gen, »mehr indifferente Sinnesorgane«; an den «Knien sämmtlicher Beinpaare kommen 2 Gruppen von zweierlei Spalten dicht neben einander vor« und sind als Gehörorgan aufzufassen. Nach Bertkau (^) häutet sich Atypus piceus und wahrscheinlich auch Gnaphosa lucifuga auch nach erlangter Geschlechtsreife noch. Muskeln von Arachniden, vergl. oben p 66 v. Limbeck. Pelseneer beschreibt die Coxaldrüsen von Mygale caementaria und M. spec. Ihre 4 Lappen entsprechen den 4 Extremitäten; ein Ausführgang fehlt. Bertkau (^) hat nun auch bei 1 erwachsenen Atypus den Ausführgang gefunden , ihn dagegen bei 6 anderen vermißt ; da aber auch bei diesen die spaltförmige Öffnung hinter dem 3. Beine sowie eine gleiche hinter dem 1. Beine vorhanden war, so tritt die Drüse vielleicht nur temporär außer Function. Bei Scurria n. sp. liegt hinter dem Spalte ein kleiner Sack, der wohl als Reservoir für das Secret der Coxaldrüse auf- zufassen ist. Der Homologisirung der letzteren mit den Segmentalorganen von Pe- ripatus stimmt Verf. um so eher zu, als er auch bei Mantis eine geknäuelte Drüse an der Hinterseite der Vorderhüfte münden sah. Glycogen bei Spinnen, vergl. oben p 7 Barfurth. Bertkau (^) bespricht die Function der einzelnen Theile des männlichen Tasters. Bei Segestria, wo er dem des Q fast ganz gleicht, ist der )^Bulbus(( ein einfacher Schlauch zur Aufnahme und Uebertragung des Sperma. Seine Epidermiszellen sind blasiges Cylinderepithel; da ihm Muskeln fehlen, so kann das Sperma nur durch Blutdruck entleert werden. Bei Cryphoeca ist dagegen der Bulbus in eine haarfeine Spitze von beträchtlicher Länge ausgezogen, die aber im Innern eines besonderen Fortsatzes liegt und mit seiner Hülfe sicher in die vielfach gewundenen Samentaschen des $ eingeführt wird. — Spermatogenese bei Arachniden, vergl. oben p 7 Gilson. Nach Blochmann besteht die Embryonalliülle eines nicht näher bestimmten Scorpiones auf einem späten Stadium aus 2 Schichten, die einander dicht anliegen; die Zellen der inneren sind klein und stets einkernig, die der äußeren sind groß und haben fast alle 2 Kerne oder 1 Kern in Theilung. Letztere ist eine directe und hat keine Zelltheilung zur Folge. Kramer verbreitet sich über die gesammte Organisation von Halaraclme hali- choeri AUm. Die untersuchten Exemplare waren alles Q. oder öbeinige Larven, die aber die Anlage des 4. Beinpaares besaßen und wahrscheinlich directzu Ima- gines werden. Allmans Beschreibung ist in vielen Punkten mangelhaft und un- richtig : seine Sternalplatte ist das Entoskelet, sein Nervensystem ist die Sternal- platte u. s. w. Im Allgemeinen ist H. gebaut wie die Gamasiden überhaupt, je- 6, Arachnidae. 69 doch sind die Mandibeln sehr abweichend gebildet, auch fehlt der Bauchtaster, jenes unpaare füßchenähnliche Organ, welches sonst vor der Sternalplatte und hinter dem Capitulum eingelenkt ist und wohl dem Gefühlssinne dient. Der Rumpf ist ungegliedert; der lange Hinterleib müßte beim Laufen nachgeschleppt werden, wäre nicht ein besonderer Muskel und außerdem ein eigener Trageapparat für ihn vorhanden, welche beide zu seiner Emporrichtung dienen ; Ersterer geht vom Hinterrande der Dorsalplatte schräg nach unten. Letzterer, ein unpaarer faseriger Strang, verbindet die Afterplatte mit dem höchsten Punkte des Rückens. Die Musculatur, welche Verf. eingehend beschreibt, ist stark entwickelt ; mitten im Thorax schwebt das Entoskelet, welches den Darm trägt und als die sehnig ge- wordene Portion der vom Rücken zu den Hüften ziehenden und diese beugenden Muskeln anzusehen ist. Das 4. Fußpaar hat, obwohl es schwächer ist als das 2. und 3., einen besonderen Hüftbeuger. Das für die Gamasiden typische Sinnesfeld nahe der Kralle des 1. und 2. Fußes ist die einzige Spur eines Nervensystems, die Verf. aufgefunden hat. Die Leibeshöhle, von den Eingeweiden nicht völlig aus- gefüllt, enthielt bei den in Spiritus conservirten Exemplaren große Luftblasen, deren Herkunft räthselhaft bleibt. Der Hinterleib zeigt unmittelbar unter der Haut eine Schicht Fettzellen, in welcher sich die Tracheen verbreiten. Der Magen im Cephalothorax hat an seinem Anfange ein Paar Blindsäcke, welche den ganzen Hinterleib durchziehen ; die langen Excretionsorgane münden wie bei Gamasus in den Enddarm, der aber hier noch eine besondere taschenartige Erweiterung besitzt, welche häufig mit dem Excrete gefüllt erschien. Speicheldrüsen fehlen wohl. Eierstock und Eileiter sind unpaar, Receptaculum seminis fehlt ; die Geschlechts- öffnung ist eine Querspalte zwischen den Hüften des 4. Fußpaares. Es war stets nur 1 weit entwickelter Embryo vorhanden und außerdem ganz junge Eier. In der Fortsetzung seiner Untersuchungen über Tyroglyphen [vergl. Bericht f. 1884 n p 80] behandelt Naiepa hauptsächlich die Anatomie und Metamorphose von Trichodactißus anonymiis Berl. Integument. Das Chitin ist an verdickten und mitKalk imprägnirtenStellen geschichtet, die Epidermis »ein Netzwerkstark verästel- ter Zellen mit spärlichen Kernen« und nur während der Häutung ein gleichförmiges Epithel. Sie geht ohne scharfe Grenze in das interstitielle Bindegewebe über, in welchem viel Calciumcarbonat und Fett (dieses mitunter in colossalen Fettzellen) abgelagert sind. Glashelle, zart längsgestreifte bindegewebige Bänder halten den Darm in der Leibeshöhle suspendirt. Die Öldrüsen entwickeln sich zu beiden Seiten des Hinterdarms aus dem Ectoblast, münden nach außen und sind mit einem cubischen Epithel ausgekleidet; ein an der »inneren Drüsenwand« inserirter Muskel dient wohl als Erweiterer der Drüse . DieExtr emitäten, welche Verf. genau beschreibt, sind nach den Geschlechtern sowohl in Form als auch in Behaarung verschieden. Musculatur. Die thoracale ist sehr ähnlich der von Kramer für Halarachnc beschriebenen [s. oben p 68]. In den Extremitäten nehmen die Exten- soren eines Gliedes stets im vorhergehenden ihren Ursprung, die Flexoren hingegen im Allgemeinen im zweiten vorhergehenden. Die Muskeln zur Bewegung der Cheliceren und des Capitulum entspringen von der Dorsalwand des Körpers. Bei manchen Muskeln ist die Querstreifung undeutlich ; auch die Sehnen sind oft nur wenig entwickelt. Darm. Das Mundrohr entsteht aus der Verwachsung von Oberlippe, Unterlippe und Maxillen ; frei beweglich sind nur die scherenförmigen Cheliceren (Mandibeln). Die Maxillen besitzen Kaulade (früher fälschlich als Labialtaster gedeutet) und Sgliedrigen Taster. Im Ösophagus existirt wie bei den Tyroglyphen ein Pumpapparat, dagegen fehlt das Epithel, wie dem Darme die Muscularis ; nur am After sind Öffner desselben und Muskeln, welche wahrschein- lich den Koth hervorpressen, vorhanden. Das Nervensystem besteht aus Hirn und Bauchganglienplatte ; Ersteres innervirt Cheliceren und Maxillarpalpen ; im 70 Arthropoda. Übrigen sind die Verhältnisse wie bei Tyroglyphus. Als Sinnesorgan kann mit Sicherheit nur der glashelle »Taststift« auf dem l . Gliede des Maxillartasters be- zeichnet werden. Das »Auge« besitzt eine Cornea und einen stark lichtbrechenden Körijer darunter ; den Opticus konnte Verf. nicht auffinden. Das Excret der 2 schlauchförmigen Malpighischen Gefäße ist reich an Harnsäure. Der männ- liche Geschlechtsapparat wird von 2 Hoden, 2 Vasa deferentia und 2 acces- sorischen Drüsen gebildet; eine eigene Vesicula seminalis fehlt nicht nur hier, sondern auch bei Tijroglyphus, wo sie Verf. früher irrthtimlich beschrieb. Dem Penis geht der mit dem Integument beweglich verbundene Stützapparat ab, wie er bei den Tyroglyphen vorkommt. Die Tunica propria der Hoden und Samencanäle ist structurlos. Die Spermatozoen sind runde bewegungslose Zellen mit großen Kernen ; die Spermatoblasten entwickeln sich aus einem Keimlager. Die weib- lichen Organe sind 2 Ovarien mit 2 langen Oviducten, Scheide und Receptaculum seminis, welches (auch bei Tyroglyplms] durch 2 kurze Canäle mit den Ovarien verbunden ist, und mit einer zur Immission des Penis dienenden Öffnung hinter dem After nach außen mündet. In beiden Geschlechtern sind rechts und links von den äußeren Genitalien je 1 Saugnapftasche mit 2 Saugnäpfen angebracht. Ob- wohl beim § t^^s Atrium genitale in der Ontogenese weit nach vorn verschoben wird, so entspringen die Retractoren der Saugnäpfe doch hier wie bei der Nymphe in der Nähe der 4. Epimeren. Im Keimlager der Ovarien ist die Kernmasse in Form von Nestern oder Strängen in dem Plasma eingebettet. Die Befruchtung scheint zu geschehen, wenn in dem noch jungen Ei das Keimbläschen an die Pe- ripherie gerückt ist. Während seines Wachsthumes macht das Ei einige Verände- rungen durch, deren Beschreibung Ref. nicht klar geworden ist, und erhält so- dann vom Epithel des Eileiters die dünne Schale. Außerdem schiebt es beim Aus- tritte mit dem oralen Pole einen gallertigen Pfropf vor sich her , welcher an der Luft rasch zu einem Stiele erhärtet und es an seiner Unterlage befestigt. Ent- wickelung der Geschlechtsorgane. Die rundlichen Anlagen der Keimdrüsen, höchst wahrscheinlich epiblastischen Ursprunges, treten zwischen Hinterdarm und Iliuterrand der Bauchplatte schon bei der Larve auf; ein Unterschied zwischen centralen und parietalen Zellen ist aber in ihnen erst nach der 2. Häutung wahr- nehmbar. Sie wachsen durch Vermehrung der Zellen ; später umhüllen sie sich mit einer Membran, welche in ein kurzes Rohr übergeht ; mit diesem befestigen sich die Drüsen am Vorderende der Afterspalte derart, als wenn sie durch luva- gination aus dem Rectum hervorgegangen wären. Bei der 1. Häutung rücken sie weiter nach vorn und vereinigen sich durch eine Querbrücke ; hier entstehen dann auch aus der Epidermis durch Einstülpung die Anlagen der äußeren Genitalien und der Saugnapftaschen. Auch in der 2. Nymphe sind die Ausführgänge noch solide Cylinder, dafür entwickeln sich nun die accessorischen Organe, und zwar das Rec. seminis als Einstülpung der retroanalen Epidermis, die Drüsen beim (^ hingegen als Knospen aus den Leitungswegen. Die Verbindung zwischen Ovarien und Rec. seminis wird durch anfangs solide, aus den Wänden beider Organe hervorwach- sende Zellstränge bewirkt. Die äußere GeschlechtsöflFnung zeigt sich erst bei der Imago; auch der Penis bildet sich erst während der letzten Häutung ; die Zellmasse, aus welcher er und die accessorischen Drüsen hervorgehen, liefert beim Q. die Vagina. Metamorphose. Bei der Gbeinigen, aus dem Ei schlüpfenden Larve ist der Verdauungsapparat bereits völlig entwickelt. Es folgen 2 Nymphenformen mit 8 Beinen; das 1. hat nur 2, das 2. schon die 4 Saugnäpfe der Imago. Das hinzukommende Beinpaar ist das 4., denn die Imaginalscheiben desselben liegen unter den Hüften des 3. Paares. Vor jeder Häutung werden die Thiere bewe- guugslos ; die Epidermis nimmt einen epithelialen Character an ; aus dem Binde- gewebe schwinden Kalk und Fett und treten dafür große feinkörnige Zellen auf. 6. Arachnidae. 71 Die Muskeln der Extremitäten werden aber nicht etwa aufgelöst , sondern ver- schmelzen nur zu einem einheitlichen Cylinder ohne Querstreifung-, während viele Rumpfmuskeln ganz intact bleiben. Demnach ist die Histolyse weniger bedeu- tend, als man früher angenommen hat. — Unter gewissen Umständen (bei Nah- rungsmangel ?) sind die 5 vivipar, haben aber alsdann regelmäßig atrophirte Ovarien. Nach Laboulbene & Megnin sollen die weiblichen Embryonen der Trombidide Sphaerogyna ventricosa stets zu je 2 in einem Ei enthalten sein ; (J^ und Q werden lebendig geboren und »se fecondent en quelque sorte en naissant«, sodaß weder Larven noch Nymphen im freilebenden Zustande existireu. Während der Em- bryonalperiode und unmittelbar nach der Geburt sind im Ilinterdarme schwärz- liche Excremente vorhanden ; sobald jedoch die Thierchen sich an Insectenlarven festgesogen haben, wird deren Blut völlig verdaut. Die Q haben auch keinen After, dagegen schwillt ihr Abdomen in Folge der Entwickelung der vielen Eier colossal an. Der Speichel der Q scheint giftig zu sein. Scudder liefert in Zittel eine Übersicht über die fossilen Arachniden (p 732-746 u. 828 ff.). Die Ahnen derselben und der Myriopoden sind wahr- scheinlich Wasserbewohner gewesen. Die 4 paläozoischen Ordnungen Anthraco- marti, Pedipalpi, Scorpiones, Araneae waren bereits im Carbon so scharf von einander geschieden wie in der Gegenwart. Die im Tertiär hinzutretenden Acari, Chelonethi und Opiliones waren vielleicht schon früher vorhanden und stammen wohl von den Anthracomarti ab. Die Myriopoden (besprochen auf p 721-731 u. 828 flf.) erscheinen paläozoisch in 2 streng getrennten Ordnungen (Protosyn- gnatha und Archipolypoda) und werden später durch 2 andere ebenfalls übergangs- lose (Chilopoda und Chilognatha) ersetzt, die aber vermuthlich nebst den auf die Jetztzeit beschränkten Pauropoda aus jenen hervorgingen. Die Dorsalschilder der Chilognathen sind aus je 2 verschmolzen; bei den Chilopoden sind auch je 2 Sternite unter Verlust von einem Beinpaare verschmolzen. B— D. Bartels, Max, Über einige giftige Thiere des Haussa-Landes. in; Sitz. Ber. Ges. Nat. Freunde Berlin p 134. [79] Becker, Leon, Catalogne des Arachnides deBclgique, Revision des especes beiges de la famille des Theridionidae. in : C. R. Soc. Ent.Belg. Tome 20 p 93—100. [80, 103, 105] Berleso, A., 1. Acari, IMyriopoda et Scorpiones hucusque initalia reperta. Acari, Myriapodi e Scorpioni Italiani. Fase. 17, 18, 20, 22, 23. Padova. [80, 81, 83, 87—93] , 2. Note relative agli Acari, Myriapodi e Scorpioni Italiani. (Note al Fase. 15 e 16), Fase. 2 Padova 80 18 pgg. [80, 83, 85, 86, 89, 93] , 3. idem. (Note al Fase. 13, 14, 17, 18, 20) Fase. 3 Padova 8« 31 pgg. [80, 83, 87, 89, 90, 93] , 4. Acari, Miriapodi e Scorpioni Italiani. Specicrum novarum repertorium. Series 1 1882, 2 und 3 1883, 4-7 1884, 8 1885 Padova. [80, 83, 86—93] , 5* Acarorum systematis specimen. in: Bull. Soc. Ent. Ital. Anno 17 p 121 — 135. [Nichts Neues; 104 Genera aus 7 Familien.] , 6. Di alcuni Acari del Museo di Firenze, colla descrizione di tre nuove specie appar- tenenti alla famiglia dei Trombididi. ibid. p 136—144 T 1. [80, 89, 92, 93] , 7. Sopraalcuni Acari: Letteraal dott. Haller in Zurigo. ibid. p 145 — 148. [83,90,91] , 8. Catalogo di Collezioni vendibili di Acari Italiani. Padova 8« 15 pgg. , s. Canestrini. Bertkau, Pli., 1. Entomologische Miscellen. in: Verh. Nat. Ver. Bonn 41. Jahrg. p 343 —363 T 7. [80, 93-96, 98, 104] 72 Arthropoda. Bertkau , 2. Über den Saisondimorphismus und einige andere Lebenserscheinungen bei Spinnen, in: Z. Anzeiger 8. Jahrg. p 459—464. [76, 77] Betloni, Eugenio, Prodromi della Faunistica Bresciana. Brescia 1884 316 pgg. [80, 94, 95, 102—106, 110, 111] Birö, L., Commensalisme de Mouches avec une Araignee. in: Rovart. Lapok 2. Jahrg. p250 Res. p 32. [78] Cambridge, O. P., 1. Descriptions of two new species of Araneidea. in: Ann. Mag. N. H. (5) Vol. 16 p 237—238 T 9A. [79—81, 9B, 95] * , 2. [CrijpJioeca moerens n. sp.]. in: Proc. Dorsetshire N. H. Soc. Vol. 6 1884 p ? T 1. [80, 104] Canestrini , G., 1. Prospetto dell' Acarofauna Italiana. Padova. Pt. 1. Famiglie : Oribalini, Gamasini, Hoplopini, Trombidini, Rhyncholophini. SO 163 pgg. 10 Taf. [80,83, 88, 89, 92, 93] , 2. Chernetides italici. Fase. 1 20 Taf. 20 Blätter Text. [= Fase. 7 und 10 zu Ber- lese(i)]. [109] , 3. Chernetides italici, Fase. 3. [= Fase. 19 zu Berlese (i)]. [80, 109, 110] Canestrini, G., & A. Berlese, 1. Sopra alcune nuove specie di Acari Italiani. in: Atti Soc. Veneto Trent. Padova Vol. 9 1884 p 175—182 T 3-5. [83, 89—91] , 2. Nota intorno a duc acari poco conosciuti. ibid. p 206 — 208 T 6—7. [88, 90] "^Capus, G., Les Scorpions et leurs ancetres. in : Magasin Pittoresque No. 6 p 96 — 98 Figg. Carlini, Angelo de, Artropodi delV Isola di S. Pietro. in: Bull. Soc. Ent. Ital. Anno 17 p 192—196. [81, 96—98, 102—106, 108] Clifford, J. R. S., Economy of G^co^r«^es stercorarius. in; Entomologist Vol. 18 p325 — 326. [88] Costa, A., 1. Diagnosi di nuove Artropodi trovati in Sardegna. in : Bull. Soc. Ent. Ital. Anno 15 1883/84 p 332—340. [80, 105] , 2. Notizie ed osservazioni sulla Geofauna Sarda. Memoria 4<\ in : Atti Accad. Napoli (2)Vol.lNo.l3. [Aracnidi p 9— 12.] [80, 81,89, 92— 95,97,98,102-106,108— 110] Dahl,Friedr., 1. Saison-Dimorphismus bei Spinnen, in: Z.Anzeiger 8. Jahrg. p 37 6 — 377. [76] , 2. Die Lebensdauer der Spinnen, ibid. p 629— 631. [76,77] * , 3. Versuch einer Darstellung der psychischen Vorgänge in den Spinnen, in ; Vier- teljahrsschr. AViss. Philos. 9. Bd. p 84— lo:i. [76] Döderlein , L., Die Liu-Iviu Insel Amami 0.shima. in: Mitth. D. Ges. Nat. Völkerkunde Yokohama 3. Bd. 1880,84 p 146—150. [79] ^Duges, Alf., [Atax Alzatei n. s^.] in: Naturaleza Mexico Tomo 6 1884 p 344. [82,92] Emerton, J. H., 1. New England Epeiridae. in: Trans. Connecticut Acad. Vol. 6 p 295 — 342 T 33—40. [79, 82, 106—108] ■ , 2. New England Lycosidae. ibid. p 481— 505 T 46— 59. Enocl< , Frede, The Life-history of Atypus piceus Sulz, in : Trans. Ent. Soc. London p 389 —420. [77] Enlz, Geza, Notes pour servir ä l'liistoire naturelle de l'^ . G . , cicadarum Götze, coccincws Schrnk. = Trombidiinn gymnopterorum (L.j; BerlCSC (') Fase. 18 [Trombidiidae]. Familie Phytoptidae. Gadeau verzeichnet aus der Normandie Phytoptus 8. Bettoni führt von Brescia auf Phytoptus 1. Über lothringische Phytoptus- OdXlQn handeln Kieffer und Schleclitendal (^) ; conf. Schlechtendal p). Als neu für Halle wird eine zuerst von Kieffer bei Bitsch gefundene Knospengalle des Weißdorns aufge- führt. Thomas (^) behandelt 40 alpine Phytoptocecidien von Cardamine 2 (n.), Draba 1 (n.), Viola 3 (1 n.) , Lotus 1, Geum montanum L. (das Erineum Gei Fries bis 2800 m Höhe das einzige Zoocecidium) , Alchemilla 1 (n.), Semper- vivum 1 (n.), Saxifraga 2 (1 n.), Homogyne 1, Bellidiastrum 1, Hieracium 1, Gentiana 4 (1 n.), Veronica 2 (1 n.), Bartsia 1, Thymus 1, Androsace 1 (n.), Euphorbia 1, Salix 15 (4 n.); als neuer Typus für Phytoptocecidien werden dicht behaarte Triebspitzenknöpfe von Salix herbacea L., an die von Schizoneuralanugi- nosa Hart, auf ülmus erinnernde Blasengallen eingeführt ; neben zusätzlichen Be- merkungen zu Schlechtendal's »Übersicht« ist Q\n Phytoptus benannt und beschrieben. Thomas C^; behandelt 87 alpine Gallenformen von 57 Pflanzengattungen; als neue Cecidien resp. deren Substrate werden aufgeführt Arten von Cardamine, Draba, Viola, Acer, Dorycnium, Hippocrepis, Alchemilla, Cotoneaster, Sedum, Semper- vivum, Saxifraga, Galium, Taraxacum, Hieracium, Gentiana, Veronica, Andro- sace, Salix ; von etlichen Cecidien sind die Erzeuger kurz beschrieben, 3 Phytoptus 6* g4 Arthropoda. neu benannt ; es wird die auffällige Verschiedenheit der Milben zweier Cecidien von Hieracium murorum L. und ? H. glaucum All. ( Blatt-Filzgallen und haarlose Blattrandrollen, N. 47) hervorgehoben. Osborn hespvicht Pki/iopins pi/ri, qtiadm- jjes und Arten von Ulmus, Fraxinus, Negundo in Jowa. LOW behandelt 1) neue Phytoptocecidien auf Achillea, Anchusa, Galium (2) , Gentiana, Lycium, Rubus, Sedum, Sempervivum, Seseli, Vitex (aus Tirol, Nieder-Österreich, Frankreich, Por- tugal); 2) für Österreich neue Phytoptocecidien von Betula, Capsella, Centaurea, Fagus, Galium (2), Lysimachia, Orlaya, Quercus, Rubus, Salix ; 3) Bemerkungen zu schon bekannten Phytoptocecidien von Acer, Betula (Erineum roseum Schultz und betulinum Schum.) , Carpinus, Cotoneaster, Crataegus, Helianthemum, Mentha, Poterium , Prunus , Tilia ; 4) über das gleichzeitige Vorkommen verschiedener Phytoptocecidien auf einer Pflanze oder auf einem Pflanzenorgane, wonach es nicht anzunehmen sei, daß eine Phytoptus-Ari auf demselben Pflanzenorgane ver- schiedene Gallen hervorrufe, während eine Milbenart sehr wohl mehrere Organe einer Pflanze in verschiedener Weise deformiren könne (an zahlreichen Beispielen von Acer, Alnus, Betula, Cotoneaster, Populus, Prunus, Salix, Tilia einerseits und Galium andererseits); 5) Berichtigungen zu Arbeiten von v. Thümen, Karpelles, F. Low, V. Schlechtendal. Hagen behandelt die Phytoptocecidien des Museums Cambridge, europäische, meist von Thomas geschenkt, und nordamericanische aus den Gattungen Acer (Cephaloneen 3, Erineen 4), Alnus (Erineum 1, Cephaloneon 1), Amelanchier (1-2), Aristolochia (Erineum 1), Artemisia (1 Knospendeformation), Betula (1 Knospendeformität), Carya (1 Blattfaltung), Clematis (1), Cornus (1 , Crataegus (2), Diospyros (Erineum 1), Elodes (1), Fagus (Erineum 1), Fraxinus (Cephaloneon 1), Gerardia (1), Juglans (Erineum 1), Plumbago (1), Potentilla (Erineum 1), Prunus 8, Pyrus (Erineum 1), Quercus (3), Rhus (Erineum 1), Salix (3), Spiraea (Cephaloneon 1), Tilia (1 Stielgalle), Thuja (1 Blattdeformation), Vaccinium (1 Blattgalle) und 1 Galle einer Leguminose; die Summe der nord- americanischen Phytoptocecidien wird auf 68 angegeben aus 33 Pflanzengattun- gen von 23 Familien. Mc Murrich hält mit Landois den 4beinigen und mit 2 rudimentären Beinpaaren ausgestatteten Phytoptus [pyri Seht.) für ausgewachsen; er sei näher mit Demodex als mit einer anderen Milbe verwandt. — Conf. Hubbard. Phytoptus Gentianae n. Q in Blüthendeformationen von Gentiana germanica Willd. p 45 N. 52 Thomas [^], p 10 Thomas (*) — gladalis n. in Cephaloneon-Gallen von Salix herbacea L. und retusaL., durch ungewöhnlich lange Schulterborsten ausgezeichnet p 57 N. 78, vilUßcus n. Q. in Filzgallen der Blätter von Hieracium murorum L., Alpen, p 44 N. 47; Thomas ^) — coryligallarum n. Italien; Tar- gioni-Tozzetti (2). Familie Demodicidae (Dermatophilidae). Bettoni verzeichnet von Brescia Demodex 1. Familie Sarcoptidae. Unterfamilie Sarcoptina. Bettoni verzeichnet von Brescia Sarcoptes 1. Unterfamilie Anaige sina. Ein Cosmopolit auf Columbiden hi Fähiger rostratus Buchh.; Trouessart \- . Beriese (') beschreibt Xohptes cluudlcam (Rob. & Megn.) G. Can. (Fig.) Ber- lese (2) macht Bemerkungen zu Anaiges passerimts D. G., mucronatus Buchh., 6. Arachnidae. C. Faunistik und Systematik. 85 chvipes und mcfr^Ms Berl., Allopfes palmaius G. Can., astatus Berl. TrOUCSSart (^) gibt p S9 eine Übersicht der Gattungen und zählt ca 80 sp. (63 n., 3 n. g. nebst zahlreichen n. var.) auf; Megninia sei in der ihr von Berlese (1882) gegebenen Fassung nicht haltbar. Nach Trouessart (') \&\>i Syringophilus bipeciinahis an Gal- linago major, Sterna hirundo, Anas boschas, clypeata, Vanellns cristatus, Capri- mulgus europaeus, ferner dem american. Trogon curucni und der ueuseeländ. Anthornis (?) melanura ; und zwar in den Spulen der Schwung- und Steuerfedern, seltener der Flügeldeckfedern, indem er die eingetrocknete Pulpe derselben zu Staub verwandelt, vor der Mauser im Herbste '.durch den unteren Nabel aus und durch den oberen in die neue Feder einwandert, da bei der Mauser, wie im Tode oder der Winterkälte, ein Stocken des Zuflusses fetter Nährflüssigkeit, welche die Milbe aufsuclit, eintritt. Picobia steht Syringophilus sehr nahe. Alloptes (Subg. von Proctophyllodes) Norneri n. (^ , Q auf Cyuanthus (mocoa), Passer, Süd- America p 63; aphyllus n. (^ auf Strobilophaga enucleator, Nord- Europa p 64 ; lobulatiis n. rf auf Meliornis sericea, Australien p 65 ; securiger n. (^ auf Microchelidon hirundinacea^ Australien p 65; pteronyssoides n. (j^ auf Pipra aureola, erythrocephala etc., Süd - America p 65; dielytra n. (^, Q auf Pipra erythrocephala und aureola, Süd-America p 66 ; microphaeton n. (^f, § ^^^ Phaeton aethereus p 66 ; phaetonüs L. var. phaetontis minor n. (;^, var. phaetontis Simplex n. (;f auf Phaeton aethereus, Südsee p 67 ; bisetatus Hall. var. bisetatus 7ninor n. c;^, Q auf Alca torda, Fratercula arctica, Uria grylle, Lorus ridibundus etc. p 68 ; cmssipes Can. var. crassipes conurus n. (J^ auf Limosa, Tringa, Eudro- mias, Squatarola, Numenius, Ibis, Dromas, Sterna etc. p 68 ; var. crassipes myo- surns n. (3f auf Dromas ardeola , Indisches Meer p 69; var. crassipes curtlpes n. auf Haematopus ostralegus, Totanus macularius, Europa p 69; abbreviaüis n. (5*, 5 auf Ibis rubra, Süd-America p 69; enryurus n. q^ auf Platalea ajaja, Süd- America p 69; hastatus Berl. = [Froctophyllodes) hemiphyllus Rob.; pahnatus Can. = [Proctophyllodes] microphyllus Rob.; Allcptes Can. nicht = Pterocolus Hall.; Trouessart [^) . Anaiges lobatus n. (^ auf Cebus elegans, Guyana p 54; ginglymura Megu., cubitalis, asternalis, oscinum^ socialis, sinuosus, velatus, cfw^ropofZos Rob. -Megn. zu Megninia \ TrOUGSSart (^) — fringillarum Hall., G. Can. = passerinus Deg.; incertus Berl. = (^f juv. 67aiv)jes Berl.; Berlese (-j. Analloptes n. g. [cfr. Pteralloptes] Megnini n. Q^ , ^ auf Rallus aquaticus , Europa p 59; var. Megninii falcinelli w. (^ , Q auf Ibis falcinellus und Platalea leucorodia, Europa p 60; bipartitus u. (^ , Q. auf Anthracocerus convexus, Anthracocorax malayanus etc., Sumatra, Malacca p 60; corrugatus n. (^ auf Anorhinus leucolo- phus, Anthracocorax malayanus, Cranorhinus corrugatus, Malacca p 61; elythrura Vi. (^ , Q. auf Bucerotiden ; Trouessart (^). Anoplitis cfr. Cheylabis n. Bddlorhynchis n. hat 2 (^ Formen, eine mit normalen, eine mit riesigen Mandibeln, deren beide Finger gleich verlängert; polymorphus u. (;;f , Q auf Querquedula crecca, Erismatura leucocephala , Spatula clypeata, Europa; Trouessart ('^) P 79 Figg. Canestrinia cfr. Michaelichus . Cellularia [Hypoderas] columhae Roberts = Fähiger rostratus (Buchholz); TrOUeSSart (2)p78. Cheylabis n. [Sectio Dermoglypheae] für Anoplitis 'Kuhy ] latus n. rf , Q auf Elanus raelanopterus, Süd-Europa und Africa, praecox n. rf,^ auf Asturina nitida, Süd- America p 85: Trouessart (^). 35 Arthropoda. Dermaleichus passennus Koch = ? Arialges chelopus (Herrn.) Berl.; Berlese ('-) — rostratus Biiclih. zu Fähiger ; coturnicis Can. = Xolojites claudicans (Rob.); Fi'lrsieti- berfft B\xchh. zu Pterolichus {Pseudalloptes)\ TrOUBSSart (^] — startiae [im Sternae) Can. = Pteronyssus P? Megnin; Megnin. Sphaerogyna n. neben Picobia , Mandibeln griffeiförmig , Maxillartaster 3gliedrig ; Laboulbene & Megnin; Megnin [cfr. Heteropus und Physogaster]. Familie Eupodidae. Scyphius tectorum n. Italien; Berlese (^) N. 21. 92 Arthropoda. Familie Hy drachnidae. Berlese (^) beschreibt und bildet ab Fase. 23 aus Italien Limnochares holoseri- ceus (GeofFr.) Latr. (kann nicht schwimmen) , Arrhenurus tricuspidator (Müll.) Berl. und sinuator (Müll.) Koch. Bettoni verzeichnet von Brescia Atax 1 ; Costa (2) von Sardinien Hyclrachna 1, Hydrotoma 1, Eylais 1. Über kleine Hydrach- niden zwischen den Trümmern eines Flosses in der Rinde versteckt schreibt Trybom. Acercus uncinatus u. Varel, Oldenburg; Könike P) p 215. Arrhenurus n. Isergebirge ; ZachariaS p 577 — tricuspidator Neum. nicht = tricus- pidator 'Müll.) Berl.; bicissus heh . = sinuator (Müll.) Koch; Berlese (^) Fase. 23 — crassipetiolatus n. p 216, claviger n. p 219, ßmbriatus n. Bremen p 220, ^nVwsjoi'rfafor Neum. nee Müll., Koch = dubius n., albartor Koch. = emarginatus Bruz. nee Müll. = Bruzeliin.; Könike P). Asperia Lernani UnW. = Midea elliptica 0. F. Müll. Q; Könike (^). Atax Alzatei n. Guanajuato ; Duges. Hydrodroma flexuosa Jaderberg, Oldenburg; Könike (^) p 222. Nesaea KoenikeiB.Q\\. = Midea elliptica 0. F. Müll. (^; KÖnikO (^). Pseudomarica longiseta n. in agri Patavini fossis ; Berlese (^) Fase. 23. iSperchonn. Isergebirge; Zacliarias p 577. Familie Erythraeidae. Berlese (^) Fase. 22 beschreibt und bildet ab aus Italien Raphignathus piger (Sehr.), clavatus (Cau.-Fanz.), Caligonus humilis (Koch), cerasinus Koch, Crypto- gnathus Lagena Kram, und erörtert die Charactere der Genera Raphignathus Dug. und Cryptognathus Kram. (Fig.). Bettoni führt von Brescia 2i\\i Erythraeus 1, Costa (2) von Sardinien Actineda 1 . Caligonus siculus n. Sicilien ; BorleSO [^] N. 1 — segnis Koch, Berl. = Raphignathus piger (Sehr.); clavatus Can.-Fanz., Berl. zu Raphignathus] impressus Koch = cerasinus Koch; sicidus Berl. zu Raphignathus (Figg.) ; robustus n. Padua, Etrurien (Figg.); Berlese f^) Fase. 22 — virescensn. Italien; Targioni-Tozzetti [-). Raphignathus patrius n. Campomolino ; Berlese (^) Fasc. 22 (Figg-); (^) p 21. ßtigmaeus humilis Koeh zu Caligonus: BorlOSe (^) Fasc. 22. Familie S m a r i d i d a e . Canestrini (^) gibt Abbildungen zu Smaris impressa, der einzigen italieni- schen Art. Familie Ehyncholophidae. Costa (2) verzeichnet von Sardinien Rhyncholophus 7, 1 var. Berlese (') Fasc. 18 beschreibt und bildet ab aus Italien Rhyncholophus nemorimi Koch nebst 2 u. Canestrini (') kennt aus Italien Rhyncholophus 12 (2 n.), als neu für Italien Rh. phalangioides De Geer, regalis Koch, quisquiliarum Herrn., er ocatus Koch; Abbil- dungen zu Rh. siculus, phalangioides, regalis, cinereus, pulcher, electoralis, squa- matus, pajjillosus, trimaculatus. Berlose [^) behandelt Rh. nemorum K. von Con- suma, 2}hala7igioides (D. G.) von Florenz, Defensa (ca. 1000 m Höhe), Vareo del PoUiuo, Lipari, und 2 n. und gibt (2) Bemerkungen zu Rh. nemortim, Cavannae, 6. Arachnidae. C. Faunistik und Systematik. 9S glohiger und {^) zu Smaridia papulosa Herrn., Rhyncholophus miniatus (Herrn.), quisquilianctn Herrn., trimaculatus Herrn., johalangioides D. G.^ squamatus Herrn. Rhyncholophus similis n. Sardmien p 144, pulcher n. Genovesato p 148 Figg.; Ca- nestrini (\) — Cavannae n. Florenz, Campanien, Calabrien, Apnlien, globiger n. Ivrea, Florenz; Berlese (*) N. 44, 45; (6) p 137, 139 Figg.; (ij Fase. 18 Figg. Familie Trombididae. Bettoni verzeichnet von Brescia Trombidium 1 ; Costa (^j von Sardinien Trom- bidium 1; Beriese (') beschreibt und bildet ab Fase. 18 aus Italien Trombidium gymnopterorum {L.) , holosericeum {h.) und 1 n., desgl. BerlOSe (^). BerleSG ^) gibt Bemerkungen zu Trombidium pusilhcmHQxm... bicolor Yi^xm., Borlese {^] zu Tr. gymnopterorum, holosericeum und setulosum. Nach Canestrini (') in Italien Trombidium 3, Ottonia 7; als neu für Italien Trombiditmi philogeum Koch, Ottonia bicolor HQvm., russata 'Koch, mollicula Koch und pu7iicea Koch. ; Abbildungen zu Trombidium holosericeum., phalangii, Ottonia spinosa, punicea, bifoliosa, trigona und mollicula. Karsch (2) verzeichnet aus dem Massai-Lande Trombidium tinctorium (L.) . — cfr. Savard '(2) . Ottonia spinosa n, Dosso di Tavon im September auf Pflanzen ; Canestrini (^) p 139. Pediculus coccineus Scop. = Trombidium gymnopterorm (L.) ; Berlese (^) Fase. 18. Trombidium fuliginostcm Herrn., Koch, Gerv., Megn., Can.-Fanz., Henning, Haller, holosericeum Hahn, Contarini, Pagenst., insectorum Herrn., hör i^tse Koch, Can.- Fanz., cordatum Koch, pexatum Koch und audiens Hall. = gymnopterorum (L.) Berl. ; rimosum Koch und latum Koch = holosericeum (L.) ; Berlese (^) Fasc. 18. — setulosum n. Sardinien; Berlese (^) Fasc. 18 N. 10 Figg.; (^] Nr. 46; (6) p 141 Figg. Familie Hoplopidae. Canestrini (^) kennt aus Italien nur Coeculus echinipes und gibt Abbildungen zu demselben. IV. Araneae. Cambridge (^) beschreibt Dictynidae 1 n., Theridiidae 1 n. Kulczynski (^) be- schreibt 28 n. sp., Drassidae 4, Thomisidae 2, Attidae 1, Lycosidae 5, Micry- phantidae 6, Theridiidae 6 (1 n. var.), Epeiridae 4. Simon (^) beschreibt Attidae 5 n. (3 n. g.), Oxyopidae 1 n. (n. g.), Theridiidae In., Epeiridae 1 n. und gibt synonymische Bemerkungen zu den Attidae, Theridiidae, Epeiridae und Tetragna- thidae. Keyserling (^j beschreibt 29 n. sp., Attidae 20 (2 n. g.), Thomisidae 1, Epeiridae 8 (1 n. g.) und gibt synonymische Bemerkungen zu den Attidae und Epeiridae. Bertkau (') liefert »weitere Beiträge zur Spinnenfauna der Khein- provinz« (p 352-359). Familie Theraphosidae (Aviculariidae) . Nach Costa (-) in Sardinien Aepycephalus 1 , Lancelevee von Seine inferieure Atypus piceus Sulz. In Ungarn nach Entz Atypus piceus Sulz., Nemesia pannonica 0. H. und Sauvagei Dorth. Simon (*) verzeichnet aus Griechenland Brachythele 1, Cyrtocarenum 3; Simon (') von Tunis Ischnocolus 3 (1 n.), Pachylomerus 1, Oyrt- auchenius 1; KarSCh ('^) vom Massai-Lande Harjmctira constricta Gerst.; Simon (^) von Madura (Ramnad) Poecilotheria fasciata (Latr.) Sim., von Wagra-Karoor bei 94 Arthropoda. Gundacul (Bellaiy) Idiojis ? crassus Sim. Nacli Hasselt (^) scheint die Type von Pelecodon sundaicus Dol. verloren und es bleibt fraglich, ob das Thier 6äugig oder Säiigig und = Calommata Luc. sei; Abbildung einer javanischen Art wird bei- gefügt. Simon (^) liefert eine Bestimmungstabelle der griechischen Cyrtocarenum sp.: ionicum, lapidarium, hellenum, (/raj'um, cunicularium. Conf. ferner LucaS ^^) , Simon (\1 . Actinopus algerianus Luc. = Pachylomerus aedificatorius Westw. ; Simon (^) . Cteniza orientalis Auss. = Cyrtocarenum lapidariimi (Luc.) ; SimOn (^j . Cyriauchenius DoleschalU Auss. = ? Walckenaeri Luc, elongatus Moggr. zu Lepto- pelnia\ Simon (^). Cyrtocephalus lajndarius Luc. zu Cyrtocarenum] Simon (^;. Ischnocolus fuscostriatus n. (^ , Q. Tunis (Djebel Bou-Hedma) ; Simon (') p 41. Leptopelma africana Auss. = elongata (Moggr.) : Simon (^). Mygale cunicularia Ol. = Ariana Wlck. = Cyrtocarenum Arianum Auss. = Cyrto- carenum cunicularium [0\.)] Simon ("'). Pelinobius n. neben Avicularia, Eurypelma, Phoneuusa, aber (^f ohne^Tibialhaken der Vorderbeine und ganz ohne Stacheln an den Beinen, muticus n. (J^ Ebene am Longidoberge ; Karsch (2) p 135 Figg. Poecilotheria n. für Scurria Koch : Simon (2). Scurria fasciata (Latl\) Koch zu Poecilotheria; SimOn (■^) . Ummidia 2^icect- Th. = Pachylomerus aedificatorius (Westw.) von Tunis, Algier, Anda- lusien; Simon (i). Familie Dysderidae. Lancelevee verzeichnet von Elbeuf Oonops 1, Segestria 2, Dysdera 1 ; Bettoni von Brescia /Seyes^na 1; Costa (2) von Sardinien Dysdera 2; Simon (*) aus Griechen- land Segestria 1, Dysdera 2, Harpactes 2 (n.), Gamasomorpha 1; Simon (') aus Tunis Gamasomorpha 1, Segestria 1, Ariadne 1, Dysdera 2, Harpactes 1. BOPt- kau f^) entdeckte Oonops pidcher (Templet.) Bl. in Neuenahr, das 1. (Q) in Deutschland. Hasselt (*) verzeichnet vom nördl. Lapland 1 ? Oonops. Dysdera spinipes Luc. = Ariadne insidiatrix Aud. ; Simon (^) — Kollari Dobl. und Westringi Cbr. = punctata Koch ; Simon (*) . Harpactes Krueperi n. (^ Athen p 344 , abantius n. (^f Euboea (Steui) p 345 ; Simon (^j. Familie Zoropsididae. Simon (') verzeichnet von Tunis Zoropsis i, Simon ("*) von Griechenland Zo- ropsis 1. Xycosoides algerica Luc, = Zoropsis ocreata Koch; Simon (^) [conf. Drassidae]. Familie Filistatidae. Costa (2) verzeichnet aus Sardinien Filistata 1 ; Bettoni von Brescia Filistata l ; Simon (^, ') von Griechenland und Tunis Filistata 1 . Familie Amaurobiida e. Nach Bertkau (^) vertritt Titanoeca tristis L. Koch von Ingelheim dort die T. quadriguttata und ist ein weiterer Beweis für den südlichen Character der dortigen 6. Arachnidae. C. Faunistik und Systematik. 95 Flora und Fauna. Simon (^) verzeichnet aus Griechenland Titanoeca 2, Amau- robius 1; Simon (') von Tunis Titanoeca 1; Lancelevee von Elheuf Amaurobius S, Costa C^) von Sardinien Titanoeca 1. Amaurobius distinctus Cbr. = Titanoeca albomaculafa (Luc.) ; Slmon ('). Familie Dictynidae. Bertkau (^) fand bei Rothenfels, Kreuznach Dictyna Koziorowiczi Sim., und beschreibt von Bodendorf im Ahrthale Altella spinigera (Cbr.) Q Fig. Lan- celevee verzeichnet von Elbeuf Dictyna 3; Costa [^) von Sardinien Dictyna 2, Simon (^) aus Griechenland Dictyna 4, Simon (^) von Tunis Devade 1, Dictyna 8 (3 n.) ; Simon (^) liefert eine Neubeschreibung- von Dictyna gratiosa Sim. (J^, Q. von Tunis, der größten bekannten Art, und eine Bestimmungstabelle der sp. bi- color, jmella, gratiosa, latens, pahnarnm, condocta , frutetorimi und olivacea. In Kamtschatka Z>/ci!yna 2; Kulczynski (^). Dictyna cognata n. (f,Q. Holland; Cambridge (') p 237 Figg. — olivacea n. (^f, Q La Goulette (Tunis), frutetorum n. (^ Ain-Draham (Tunis) und Algier, p 32, palmarum n. c;^, Q Gabes (Tunis) und südl. Algier p 33, scalaris Can. = bicolor Sim.; Simon [^]. Familie üloboridae. Simon (^) verzeichnet aus Griechenland Uloborus 1 , Simon (^) aus Tunis Ulo- borus 2. Familie Eresidae. Simon ('*) verzeichnet aus Griechenland Eresus 1, Simon (^) von Tunis Stego- dyphus 2, Eresus 1, Dorceus 1, Adonea 1 und beschreibt neu Dorceus eburneus Sim. (^f, Q.] Pavesi (') von Massaua Stegodyphus lineatus Latr., Karsch (^i aus dem Massai-Lande Dresserus fuscus Sim. Q adult., Simon (^) von Algier /S^^e^ot/y- phus Diifouri Aud. Eresus Audouinii Br., jmniceus Koch, Sim., Theisi Br., moerens Koch nee Sim., prui- nosus Koch, ctenizoides Koch, luridus Koch, sicuhis Luc. = Walckenaeri Br., lautus Sim. = ? moerens Sim. (^ uec Koch; Simon (^)- — acanthophilus Duf., lituratus "Koch, fuscifrons Koch, unifasciatus Koch = Stegodyphus lineatus Latr., semicinctus Koch = Stegodyphus Dufouri Aud., Guerini Luc. = cinnaberinus Ol. + Petagnae -f- Lucasi etc., eburneus Sim. zu Dorceus Koch; Simon (^). Familie Palpimanidae. Simon (*) verzeichnet aus Griechenland Palpimanus 1 , Simon (^) aus Tunis Paljnnianus 1, Simon (^) aus Bellary (Wn-rn-Karoor bei Gundacul) Palpimanus gibbulus Duf. Palpimanus haematinus Koch = gibbulus Duf.; Simon (^). Familie Drassidae. Bertkau (^) fand bei Olbrück in der Eifel Clubiona pallens (Hahn). Bettoni ver- zeichnet von Brescia Chiracanthium 2, Clubiona 1, Costa ('^) von Sardinien Pros- gg Arthropoda. theshnal, Drassus \, Chibiona 1, Cheiracanthium \, LancelGVee von Elbeiif J/z- caria 1, Prosthesima 5, Drassus 4, Gnaphosa 1, Cluhiona 13, Chiracanthium 4, Anyphaena 1, Micariosoma 2, Liocranum 1, Agroeca 3, Zor« 1, Carlini von der Insel St. Peter Drassus macelUnus Thor, und Prosthesima latipes iCan.), Simon (^) aus Griechenland Micaria 1, Micariolepis 1, Aphantaulax 1, Drassus 4 (In.), Prosthesima 6 (1 n.), Pythonissa 3, Cluhiona 1, Chiracanthium 2, Trachelas 1, Zi- ocranum 2; KulCZynski (^) aus Kamtschatka Micaria 3 (2 n.), Prosthesima 1, Drassus 1, Gnaphosa 1, Cluhiona 2 (In.), Chiracanthium 1 (n.) ; Simon (') aus Tunis Micaria 2, Aphantaulax \, Prosthesima 3 (In.), Echemus 2 (n.), Megamyr- mecium 2 (n.) , Poecilochroa 1, Drassus 4, Gnaphosa 1, Pythonissa 3, Chira- canthium 2, Trachelas 1, Zora 1. ^ona [cfr. Pavesi i})]fastuosa Pav. = Micariolepis clives (Luc); Simon (^) . Chiracanthium Orientale n. (J*, Q Kamtschatka p 45; KulCZynski (^). Chrysofhrix sple7ididissimaSiim. = Micariolepis dives (Luc); Simon ("*) . Cluhiona picta n. Q Kamtschatka p 44; KulCZynski (^) — oblonga Luc = Drassus lajndosus Wlck., ornata Luc = Chiracanthium pelasgicwn (Koch); Simon (^) — vegetah. Koch = />««'? , Peponocranium 1, Cnephalocofes 1, Pocadicnemis 1, Thyreosthenius 1, Plaesiocraerus 3, Tapinocyba'2, Panamomops 1, Minyriolus 1, Widena2, Walckenaera 3, Prosopotheca 1, Tigellinus 2, Corni- cidaria 3, Ceratinella 3, iI/«5o 1, Minicia i, Bockor aus Belgien Donacochara 1, Gongylidium 8, Zi'so 1, Erigone 3, Lophomma '6, Dicymhium 1, Gonatium 4, Z)js- modicus 2, Diplocephalus 1, Typhochrestus 1, Gongylidiellum 1, Nematogmus 1, Entelecara 3, Araeo7icus 1, Troxochrus 1, Lophocarenum 3, Cnephalocotes 2, Poca- dicnemis 1, Erigonoplus 1, Styloctetor 1, Plaesiocraerus 1 , Tapinocybal, Minyrio- lus 1, Panamomops 1, Wideria 3, Walckenaera 3, Prosopotheca 2, Tigellinus 2, Cornicularia 2, Ceratinella 2, Jfaso 1, Simon (^) aus Tunis Trichoncus l, Gongy- lidium 1 , Erigone 2 , Thaumatoncus 1 , Entelecara l , Delorrhijns 1 , Tapinocyha l , Hasselt (^) Erigone quisqtdliarum Westr. aus der Umgegend von Breda, Hasselt (^) von Nord-Lapland Neriene atra Bl. [Erigone vagabilnda Westr.), lo7igipal2ns Sund, und ? ri(/« Wid., Kulczynski (^) aus Kamtschatka Gongylidium 3 (2 n.), Gonatium 1 (n.), Dismodicus 1, Diplocephalus 1, Entelecara 1, Cornicularia 2 (l n.), j&n- ^one 2 (n.) . Hasselt (^) gibt eine Übersicht der neueren Litteratur über Spinnen-Mikro's ; Kulczynski (^j fand im Winter 1880 in Bienkowice (7 km südlich von Wieliczka) einen Zwitter von Erigone [Gongylidium) fusca (Blackw.) mit linker (J' und rechter 5 Hälfte und Asymmetrie des Geschlechtsfeldes. Cornicidaria lepida n. (^, Q Kamtschatka; KulCZynski (^) p 39. Entelecara nuncia Sim. = graeca (Cbr.) nee Tapinocyba ; Simon {'*) [conf. Erigone], Erigone"^. camtschadalica n. Q p 41, [Ceratinopsis'f) aliena n. (J' Kamtschatka p 40; Kulczynski (') — graeca Cbr zu Entelecara, s^nnosa Cbr. = vagans Aud.; SimOn (^) — digiticeps Pavesi Catal. = Delorrhipis fronticomis Sim.; SimOn (^) • Erigonoplus Krueperi n. t^ Athen; Simon (*) p 335. JQ4 Arthropoda. Gnathonarium Eu/il/sianumKav&ch = ? Gongylidium dentatum Wider; Simon (*). Gonatium convexum n. Q. Kamtschatka; Kulczynski (i) p 38. Gongylidium supposikim n. 2 P ^^^ ^'*^^ ^^- Q Kamtschatka p 37; Kulczynski ('). Walckenaera alexandrina Cbr. zu Tapinocyba\ Simon ('). Familie Agelenidae. Carlini verzeichnet von St. Peter Textrix coarctata Duf., Costa ('^) von Sar- dinien Textrix l, Bettoni von Brescia Agelena 1, Tegenaria 1, LanCOlevee von El)3euf Coe/o^es 2, Tegenaria 1 ^ Simon ( ') aus Griechenland Tegenaria 3, Textrix 2, Agelena 1, Simon (') aus Tunis Agelena 1, Tegenaria 1, Textrix 2, Simon ('^j von Tempe Agelena labyrinthica Gl. var. orientalis G. Koch, vom Ossa (Spilia, Hagios- Demetrios) Tegenaria parietifia Fourcr. Hadites myops n. ^ Gtrotte Kokkino- Vracho, Ossa, im Juli; Simon (-^j p 212. Lycosoides rvfipes Luc. = Textrix coarctata Duf. ; Simon (']. Tegenaria mhtilis Sim., Thor, = pagana G. Koch (auch in Tunis); Simon (*). Textrix f er ruginea G. Koch und Moggridgei Gbr. = coarctata Duf.; Simon (') [couf. Lycosoides] . Familie Hahniidae. Lancelevee verzeichnet von Elbeuf Hahnia 2, Bortkau (^) von Bonn Cryp/weca inirabilis Thor. (Figg.) an den Ulmen des Hofgartens zwischen den Ritzen der borkigen Rinde lebend, und ? Hahnia pusilla (G. und L. Koch), Lanceievee von Elbeuf Cicurina 1. Nach Bortkau (') gehören Cryphoeca, Cicurina und Tuber ta zu dieser Familie und nicht zu den Micryphantiden. Cryphoeca nioerens n. England; Cambridge ("^) — nioerens Gbr, = ? mirabilis Thor. ; Bertkau (i). Familie Hersiliidae. Simon (') verzeichnet aus Tunis Hersiliola 1, Simon [^) von Wagra-Karoor bei Gundacul (District Bellary) Hersilia Savignyi Luc. Hersilia Lucasi Gbr. und oraniensis Luc. = Hersiliola maculata (Duf.); Simon ('). Familie Urocteidae. Simon {^] verzeichnet von Tunis Uroctea 2. Familie Scytodidae. Costa (^) verzeichnet von Sardinien Loxosceles 1, Lancelevee von Elbeuf »^ry- todes 1, Simon (') aus Griechenland Scytodes 1, Loxosceles 1, Simon (') aus Tunis Scytodes 3, Loxosceles 2, Simon (^j von Ramnad, District Madura, die bisher nur aus Süd- Arabien bekannte Scytodes univittata Sim. Familie Pholcidae. Costa ('^) verzeichnet von Sardinien Pholcus \, Bettoni von Brescia Pholcus 1, Lancelevee von Elbeuf P/iofo^s 1, Simon (*) aus Griechenland PAoto^s 1, Holo- cnemus 1, Simon (') aus Tunis Holocnemus 1, PavesI (') von Assab Artema 6. Arachnidae. C. Faunistik und Systematik. 105 (Pholcus) borbonica (Vins.), Simon [^) von Wagra-Karoor bei Gimdacul, District Bellary, Artema maurica Wlck. . ■ Pholcus barbarus Luc. und ruralis Bl. = Holocnemus rivulatus Forsk.; Simon (^) — nemastomoides C. Koch = jj/ialangwides Fließl., imjjressus C. Koch = Holocnemus rivulatus Forsk.; Simon (^) — borbonicus Vins., comexus Bl. p. p. und ? disiinctus Cbr. = Artema maurica Wlck.; Simon (^j. Familie Zodariidae. Simon (^) verzeichnet aus Griechenland Zodarium 2 (1. n.), Simon (') aus Tunis Zodarium 3, Selamia 2 (1 n.) und liefert eine Bestimmungstabelle der Selamia- AxiQw: histrionica, segmentata und reticidata Sim. Selamia segmentata n. Q. Tunis (Keruan) ; Simon (^) p 29. Zodarium frenatum n. i^ Naxos ; Simon (^) p 336. Familie Theridiidae. Carlini verzeichnet von St. Peter Argyrodes gibbosus (Luc), Theridium aulicum Koch^ Costa (^) von Sardinien Theridion 7, Enojjlognatha 2 ^ Euryojris 1, Teutana l, Linyphia 3, Bottoni von Brescia Theridium 1, Lancelevee von Elbeuf Ero 2, Ejnsiims 1, Nesticus 1, Theridion d, Pholcomma 1, Dij)oena \, Lasaeola 1, Steatoda 1, Crustulina 1, Asagena \, Enoplognatha 1, Pedanostethus 2, Ta^mioj^a 1, Fron- tina 1, Bolyphantes 1, Drapetisca 1, Linyphia 6, Lepthyphantes 8, Bathyphantes 5, Porrhomma \, Tmeticus 5, Microneta 2, Sintula 1, L. Becker aus Belgien £'/-o 2, Fpisinus 1, Nesticus 1, Theridion 15, Dipoena 1, E^iryojns 1, Pholcomma 1, Xa- saeola 2 , Steatoda 1 , Crustulina 1 , Teutana 1 , Lithyphantes 1 , Asagena 1 , ^no- plognathal, Pedanostethus 2 , TapinopaX, Frontina 1, Drapetisca i, Linyphia 10, Taranucnus 1, Labulla 1, Lepthyphantes 8, Bathyphantes 5, Porrhomma 2, Tmeticus 5, Microneta 2^ Sintula 2, Simon (^) aus Griechenland ^ro 1, Theridiosoma 1, Formicina 1, Fpisinus 1, Theridion 2, Teutana 1, Crustulina 1 (n.), Lithyphantes 3, Latrodectics 1, Euryopis 3, Enoplognatha 3 (2 n.), Linyphia 2 (1 n.), SimOn (^) von Tempe Euryopis sexalbomacidata (Luc), aus der Grotte Kokkino - Vracho (Monte Ossa) Nesticus eremita Sim., Simon (^) aus Tunis Mimetus 1, Theridion 8, Lithyphantes 3, Latrodectus 2, Dipoena 1, Lasaeola 3 (2 n.), Euryopis 2, Lepthy- phantes 1, Enoplogiiatha 2, Microneta 1, KulCZynsl P 320 [cfr. Ejwira]. Nephila ornata Bl. zu Argiope ; Simon (^; . Singa atra n. Q. Kamtschatka; KulCZynskJ ('j p 23 — Simoniana n. Q Sardinien; Costa (2) p 31 — grammica n. ^ p 328, attica n. Q. Athen p 329; Simon (') — variabilis n. Maine, Massachusetts, Connecticut (Figg.) , pratensis n. Massa- chusetts, Connecticut p 322 Figg., maculata n. Connecticut p 323 Figg.; Emerton (^). Stanneoclavis (Butl.) n. subg. von Gasteracantha hsitr. Abdomen unten mit conischem Höcker, Cephalothorax oben stumpfhöckerig, ungelappt ; Simon p) [cfr. Gaste- racanth(i\ . Tatacantha Butl. = Actinacantha Sim.; Simon (^) . Tetracantha Sim. = Gasteracantha Ltr. s. str.; Simon (^) . Thelacantha Hass. = Stanneoclavis Butl.; Simon (•^) . Zilla dispar n. (^, Q Kamtschatka; Kuiczynsi(i (^) p 24. Y. Opilioues. Hansen (') gibt eine Bestimmungstabelle der gien. der Oiiiliouiui [Liohmum, Mitopus, Fhalangium, Platyhunus, Acantholojihus] , nebst Ischyropsalis, Nemastoma und Trogulus. Familie Trogulidae. Hansen (') verzeichnet aus Dänemark Trogulus tricarinatus (L.) , Lancelevee von Elbeuf Anelasmocephalus 1 , Trogulus 1 , Metopoctea 1 , Costa ('-) von Sar- dinien Dicranolasma 1 , Simon (*) aus Griechenland Trogulus 1 , Simon (') aus Tunis Dicranolasma 1 , Anelasmocephalus 1 . Trogulus torosus -Q.. Süd-Dalmatien : Spica-Sutomore, Juni, die größte Art; Simon (3) p 218. Familie Nemastomidae. Hansen (^) verzeichnet aus Dänemark Nemastoma lugubris (0. F. Müller), Lancelevee von Elbeuf Nemastoma 1 , Simon (*) aus Griechenland Nemastoma 2 und liefert eine Bestimmungstabelle der griechischen Nemastoma aurosum L. Koch, humerale C. Koch, superbum, globiferum und spinulosum L. Koch nebst Beschrei- bung von N. aurosum L. Koch, Costa i^] von Sardinien Nemastoma 1 . Nemastoma thessalum n. Q Spitze des Monte Ossa p 216, Stussineri n. (^ Grotte Kokkino-Vracho auf dem Monte Ossa, 4. Juli; Simon (^) p 217. Familie Phalangiidae. Hansen (\) verzeichnet aus Dänemark Liobimum 3 (Bestimmungstabelle von rotxmdum Latr. , Blackwallii Meade, rupestre Herbst), Mitojms morio (Fbr.), Fhalangium 2 (Tabelle zu cornutum L., parietinum Deg.), Platybunus corniger (Herrn.) , Acantholophus 4 (Tabelle zu terricola, ephippiatus, tridens C. Koch und epUppiger Sim.), Hassolt (*) von Nord-Lappland OUgolophus alpinus (Herbst), Lancelevee von Elbeuf Sderosoma 2, Liobunum2, Phalajigium 1, Platijbunus 2 , Megabunus 1, OUgolophus 2, Acantholophus 2, Carlini von St. Peter Phalangium 6. Arachnidae. C. Faunistik und Systematik. 109 opilw Jj., Costa (^) von Sardinien PÄrt^anymm 1, Dasylobus 2, Acantholophus 1, Simon (^) aus Griechenland Egaenus l, Dasylobus 3, Phalangium l, Simon (^) von Tempe Egaenus crista BniUc und Aca7itholop/ius annulipes L. Kocli (mit ge- nauerer Beschreibung), Simon (^) aus Tunis Liobunum 1, Acantholophus 1, Pha- langium 4 (1 n.), Dasylobus 1. Dasylobus egaemides n. Q. Spitze des Ossa; Simon {^) p 215. Egaenus diadema n. 2 Monte Ossa und Constantinopel ; Simon [^) p 214. Oligolophus Sim. = Mitojyus Thor. + Acantholophus C. Koch, palUatus (Ltr.) Sim. = ? Mitoptis morio [Fhv.j , palpinalis (Herbst) Sim. = ? Acantholophus terricola C. Koch ; Hansen ('). Opilio luridus C. Koch = Phalangium propinquum Luc. , cii'tanus C. Koch zu Pha- langitim; Simon (') — instratus , pristis und laevigatus L. Koch zu Dasylobus, obliquus ? zu Dasylobus^ pracfectus L. Koch = ? Phalangixim opilio L. var.; Simon (1). Phalangium semiechinatum n. (^ Djebel-ßecas (Tunis) p 53, afrieanum Pavesi Catal. = propinquum "Lwo,.; Simon (*). Familie Phalangodidae. Simon (^) verzeichnet aus Tunis Phalangodes 1. Ptychosoma vitulina S0rensen zu Phalangodes ; Simon (^) . Familie Gonyleptidae. Biantes n. von Hinzuanius durch nur 4 Tarseuglieder an den Beinen des 3. und 4. Paares und die ungedörnelten Hinterschenkel abweichend p 24, longimanus n. (^ Wagra-Karoor bei Gundacul, District Bellary, vittatus n. (^ Madagascar, Nossi- be p 25; Simon (2). VI. Chelonethi (Pseudoscorpiones). Hansen (^) liefert einen Conspectus systematicus der dänischen sp. ; die Cheli- ferinae sind durch Chiridium l, Chelifer 8, Garypus l (n.) vertreten [Olphmi fehlt) , die Obisiinae durch Obisium 1 , Chthonius 1 . Canestrini f^) behandelt mit Abbildungen 17 italienische sp., 2 n. g, 2 n. sp., Chelifer S (l n.), Acts u., Atemnus (n.) 2 (l.n.), Ronciis 2, Chthonius 1, Cheiridium 1, Garypxis 1, Olpium 1, Obisium 1. Canostrini (^) behandelt mit Abbildungen Chelifer mit 3, Obisimn generisch mit 1, Garypus generisch mit 1 (n.), Chthonius mit 2 Italien. Arten, und Olpium generisch. Familie Cheliferidae. Hansen (^) verzeichnet aus Dänemark Chiridium museorum (Leach) , Garypus 1 (n.), Chelifer gramdatus C. Koch, dejn-essus C. Koch, Schaeßeri G. Koch, subru- ber Sim., cimicoides Fbr,, scorpioides Herm., nodosus Schrk., IVideri C. Koch und gibt eine Bestimmungstabelle der 6 Chelf er- Arten] Lancelevee verzeichnet von Elbeuf Chelifer 1 ; Canestrini {'^) aus Italien Chelifer cymeus L. Koch, phaleratus Sim., montigenus ^im. ; Costa(2) aus Sardinien Chelifer 2 ; Simon (^) aus Griechen- land Chelifer 2, Olpium 1 ; Simon (^) aus Tunis Chelifer 8 (1 n.), Atemnus 2, Garypus l, Olpium 1, Minniza 2 (1 n.). 4 1 A Arthropoda. Chelifer punctatus n. Gayndah p 45 Figg., brevispinosus n. Gayndah, Rockhampton, Peak Downs p 46 Figg., ramosus n. Rockhampton p 47 Figg., brevidigitahis n. Australien p 48 Figg., px/gmaeus n. Australien (in der Tabelle p44); Keyser- ling (^) — Mmjeti n. Gafsa (Tunis) p 48, nodosus Schrank var. africanus n. Tunis (Ain-Draham) und Algier p 49, lampropsalis L. Koch, Sim., Canestr. = tuber- culatus Luc, pedicidoides Luc, brevipaljns Can. und Ninnii Can. = Degeeri C. Koch, Leiom-neuxii Sim. und /«raw« Thor. zuAiemntis, Bravaisi Gerv. = Garypus Beaiwoisi '&>2iY . \ Sim Oll (^). Garypus latus n. Dänemark; Hansen (^ ^) p 550 ; — meridionalis n. Rom, Figg., minor G. Can. nee L. Koch = meridionalis n. ; Canestrini (^) — litoralis L. Koch, Sim. und saxicola Waterh. = Beauvoisi Sav. ; Simon (^). Minniza deserticola n. Tunis (Gabes) und Algier; Simon (^) p 50. Olpium Hermanni L. Koch nee Sav. = pallipes Luc. ; Simon (^). Familie Obisiidae. Hansen (^) verzeichnet aus Dänemark Obisimn muscor^mi Leach und Chthonim tetrüchelahis (Preyßler) ; Lancelevee von Elbeuf Obisium 4, Chthonius 1 ; Bettoni von Brescia Obisium 1 ; Canestrini (^) aus Italien Obisium dolicodactylum G. Can., Chthonius orthodactylus Leach (auch für Sicilien) und tetrachelatus Preyßler; Costa (^) von Sardinien Obisium 2; Simon (^) aus Griechenland Obisium 2 (1 n.): Simon (^) aus der Grotte Kokkino-Vracho (Monte Ossa), aus Tyrol und Dalma- tien Obisium praecipuum Sim., vom Ossa Chthonius tetrachelatus Preyßler; Si- mon (*) aus Tunis Obisium 1, Chthonius 1. Chthonius caecus n. Grotte in Kokkino-Vracho, Monte Ossa; Simon [^) p 214. Obisium hellemim n. Athen und Naxos ; Simon (•*) p 349 — blothroides Tora. = ? jyraecipuum Sim. ; Simon (^) — sublaeve Sim. = dolicodactylum G. Can. ; Cane- strini (3). VII. Scorpioues. Nach Kobelt hat sich der große Scorpion höchstens in ;den Ruinen von Alt- Biskra eingenistet und ist in der umgebenden Wüste unter Steinen und Büschen nicht selten ; der Wüstenscorpion ist nicht schwarz, sondern lichtbraun. Vergl. Paläontologie. Vergl. auch oben p 6 Lankester, Benham & Beck. Familie Buthidae (Androctonidae). Simon {*) verzeichnet aus Griechenland Buthus 2 ; Simon (^) von Tempe Bu- thus Peloponnensis C. Koch; Simon (') aus Tunis Buthus 4 (1 n.) ; Pavesi (^) von Assab Androctonus Aeneas C. Koch, Buthus europaeus (L.), scaber (Ehr.) und?mm«a;L. Koch. Keyserling (i) von Sydney, Bowen, Rockhampton und Peak Downs Isometrus melanoj^hysa (L. Koch), Figg., von den Inseln des Stillen Oceans Isometrus maculattis (Deg.), Figg., von Sydney, Gayndah, Rockhampton, Peak Downs und Viti Levu Isometrus variatus Thor, und liefert von diesen und 2 n. eine Bestimmungstabelle von (J^ und Q. Androctonus bicolor Luc. = Buthus Aeneas C. Koch ; SlmOn (*) • Butheolus litoralis n. am Gestade des Erythräischen Meeres bei Assab ; Pavesi (^) p 197. Buthus arcnicola n. Tunis, Ägypten, Algier; Simon (') p 51 -^fulvipes C. Koch zu Scorpio [Pandinidae] ; Simon (2). 6. Arachnidae. C. Faunistik und Syiätematik. 111 Isomeiroides n. von Isometrus durch Mangel des Vesicaldorns und glattes, ungekieltes 5. Scliwanzglied verschieden p 16, angusticandus n. Peak Downs p 19 Figg. ; Keyserling (') [cfr. Isometrus]. Isometrus Thorelliin. (j^, Q Sydney, Rockhampton p 12 Figg., perßdus n. Q Viti Levu p 15 Figg., vesms Karsch zu Isometroides n. Figg. ; Keyserling ('). Familie Pandiuidae. Bettoni verzeichnet von Brescia Euscorpius 2, Carlini von St. Peter Euscorpms ßavicaiulis (Deg.), Simon (^) aus Griechenland J5'?«7- lipes Newp. = aurantiipes Newp. ; Meinert. Cryplops validxis n. Zanzibar p 210, patagonicus n. Puerto Bueno (Patagonien), sul- catus n. Bee Spring (Kentucky) p 211, posticus Say - ? Opisthemega spinicauda Wood; Meinert. Cupipes ungidatis n. Grande Anse (Hayti), Port au Prince, Pernambuco, qnadrisulca- fi/s n. Ascension (Südsee) p 187, öms/Ä'ewsw Humb.-Sauss. = ? ungulatis Mein.; Meinert. HeteroStoma albidum n. Singapore Figg., bisulcatum n. Borneo (Matang) ; TÖmÖSväry p 65 Figg. — sulcidens Kohlr. = ? trigonopoda Leach ; Meinert. Opisthemega crassijws n. Jacksonville, St. Johns River (Florida), Pennington's Gap (Virginien), Bee Spring (Kentucky), insulare n. Sandwich Inseln; Meinert p 209. Otostigma n. für Otostigmus Por., occidentalen. Grande Anse (Ilayti) ; Meinert p 185. Rhoda n. Scolopendrine, von CiqnpesvoM 1 7 gliederigen Fühlern der langen Beschrei- bung nach nur durch 19 gliederige Fühler zu unterscheiden, TJimjerixa. Santarem ; Meinert p 188. Scolopendra ßavicornis n. Borneo (Matang) Figg., var{i-spi7wsa n. Figg., aurantipes n. Borneo (Sarawak) Figg., nudipes n. Singapore; TÖmÖSVäry p 67 Figg. — occi- dentalis n. West-Küste Mexico's p 197, IVoodii n. Vereinigte Staaten (Massachu- setts, Virginien etc.) p 198, longispina n. Maldonado (Brasilien) p 199, mgosa n. Hong-Kong p 202, i7idica n. Ost-Indien, Koolloo, Himalaya, Ambala p 204, insigins Gew., gigantca Por., prasinipes und cjiileptica Wood = gigas Leach, pimcti- ceps und punctiscuta Wood = prasina C. Koch, Grayi, complanata , iiwerta nnd mnltispinosa [mtdtisjnnata) Newp., Sagraca Gerv. und ? torquata Wood = alternans Leach, Newp., loiigipesWooA = crudelis C. Koch, Por., castaneiceps , polymorpha und Copeana Wood, sowie ? mysfeca Humb.-Sauss. und Azteca, Otomiia, Maga, Tolteca Sauss. = heros Girard, Wood, Porat, punctiventris Newp., jmrra Wood = viridis Say, Wood, Kohlr., inacquidens Wood nee Gerv. = Woodü Mein.; Meinert. Srolojjcndrojjsis hclvola C. Koch = ? Scolopacrgptops sexspinosiis (Say); Meinert. Sfolopocrgptops gcophilicornts n. Java; TÖmÖSVäry p 65 Figg. — georgicus n. Geor- gia p 180, spi7iicauda Wood = sexspiiwsa (Say), ? ?«f'/rt»os^o?«« Newp. und 7)u'lano- soma Gerv., sowie scxspi7wsiis Kohlr. e. p. = 3Iiersii Newp. ; Meinert. Theatops posiica Newp. = *? Opisthemega spi7iicauda Wood; Meinert. Familie Geophilidae. \}q\)Q\' Scoliopla7Ks acumi7iatus YQV^X. Richard. Vergl. ferner *Castelli. Bettoni verzeichnet von Brescia Stigmatogastcr 1, Hi77iantarin7n 1; Cariini von St. Peter Geophilus 77iaxillaris Gerv.; Costa (■^j von Sardinien G^eo/? /«7ms /«•?•?<- 7. Myriopoda. C. Faunistik und Systematik 123 ginem C. Kocli, sodalis Mein., Stigmatogaster gracüis Mein., Chaetechelyne vesu- viuna Newp. ; Tömösväry von Java und Borneo (Matang) Mecishccphalus puncü- frons Newp. ; Underwood von Nord-America Älecistocephalus 4, GeopMlus 6, Strlgamia lü ; Moinert verzeichnet Mecistocephalus pimctifrons Newp. von Ost- indien : Koolloo (Himalaya), Ambala, GeopMlus cephalkus Wood von Michigan und Zanzibar, Scolioplanes bothriopus (Wood) von Massachusetts, Scoliopkmcs chmwp/iilus (Wood) von Cambridge (Massachusetts), Scolioplanes parviceps Wood von Nord-America, Himantarium taeniopse (Wood) von San Diego, Californien, Hirn, laticeps (Wood) von Texas, Orphnaeus lividus Mein, von den Sandwichs-, Gesellschafts- und Ascension-Inseln, sowie von Zanzibar, Orph. brasUiensis Mein, von Rio de Janeiro, Panama, Poloon (Nicaragua), NotiphiUdes Maximiliani (Ilum.- Sauss.) von Guatemala. Gonibregmatus Cumingii Newp. von den Philippinen; Jordana y Morera. GeopMlus crassicauda n. Sardinien; Costa (*) p 340 — Ccmesirinii Fear . = CMiele- c/ielgne vestwiana (Newp.) ; Costa ('^) — Htmibet-tii n. Italien (mit angeblich 74 Beinpaaren!); Beriese (^) 1883 — mordax n. Q, Vereinigte Staaten p 217, rnarginalis n. (^ Key West, Florida, nrbicus n. Q Cambridge, Mass. p 218, georgianus n. Q Georgia p 219, occidentalis n. (^ San Francisco, Californien, Mironicus n. (J^, Q Massachusetts, Neu-England p 220, laevis Wood = cepMdicus Wood; Meinert. Himantarium insigne n. Q, p 227, indicmn n. (J', § Koolloo (Ostindien) ; Meinert p 228. MecistocepMilus sulcicollis n. cf , $ Borneo (Sarawak); Tömösväry p 64 Figg. — heros n. (^ Insel St. Mauritius, breviceps n. Q Nantucket Massachusetts p 214, Mtcrupiis Humb. und ? Guildingii Newp. zVi punctifrons Newp. ; Meinert- Orphnaeus conf. Orya. Orya Xanli n. (^, Q Siam (Bangkok), Borneo (Matang), Sumatra [der Diagnose nach nicht Orya, sondern ein Orp/macus]; Tömösvary p G4 Figg. Scolioplatics robusius n. ^ Nord-America, exuln. (^ Patria? p 224, (?) longicomis n. 9 Patria ? (an nov. gen. ?, 1 Exemplar) ; p 226 Meinert. Strlgamia bothriopus, chionophila, parviceps Wood = ? ZU Scolioplanes, flava Sager = ? Scolioplanes bothriojms (Wood) Mein., taeniopsis Wood und laticeps Wood zu Himantariiim\ Meinert. Familie Lithobiidae. lieber die Stigmenzahl bei Henicops cfr. Haase ('■) ; die Arten von H. sind «wahrscheinlich Zwitter« nach Feiler {}). — Lithobitis niicrups Mein, in Ungarn nach j-lorväth ; Bettoni verzeichnet von Brescia Lilhohius 2 ; Costa C"^) von Sar- dinien Lithobius lapidicola Mein., audax Mein., imprcssus C. Koch. Nach Under- WOOd in Nord-America Lithobius 18, Henicops [Lamyctes] 1. Bothropolys nobilis Wood, mullidentatusWood=Lithobius mullidentatus'Newp. ; Meinert. Lithobius oligojwrns n. Sardinien; Latzel bei Costa (') p 30-31 — Latzelii n. (^ Crandall, Virginien p 175, Cantabrigcnsis n. ^ Cambridge, loivensis n. Q Iowa p 17 7, Americanus Newp., Wood, nmltidentatus Wood = for/icattis (Linn.) ; Meinert. Familie Cermatobiidae n. Zwischen den Lithobiidae und Scutigeridae : Tarsen vielringelig {Scutigera), 15 Rückenplatten [Lithobius), 7 Stigmenpaare unter den Rückeuplatten [Henicojis]-, Haase (») p 695. J24 Arthropoda. Cermatübius n. g. Zwischen dem großen, hinten tief ausgeschnittenen, 7. und 8. Rückenschilde kein Zwischenschildchen ; Stigmata von lang ausgezogenem Oval wie bei den Rückenstomata von Scutigcra\ Martensii n, Q. Adenare bei Flores (Mus. Berol.); Haase p) p 695. Familie Scutigeridae. Conf. Haacke. Bettoni verzeichnet von Brescia Scutigera 1 ; Costa {^) von Sar- dinien Scutigera coleoptrata L. ; TÖmÖSVäry von Ostindien Scutigera serratipes Gerv. UnderwOOd von Nord-America Scutigera 2 ; Meinert Scutigera serratipes von Pennaculum (Süd-Indien) und der Insel St. Mauritius, Scut. forceps (Raf.) Wood von Texas und Massachusetts. Cermatia Mexicana Sauss.-Humb. = ? Scutigera forceps (Raf.) Wood; Meinert. Scutigera castanea n. Q Koolloo p 171, nigro-vittata n . Q Panama, microstoma \\. Q Amballa, Koolloo, Indien p 173, Templetoni Humb. = 'f. serratipes Gerv.; Meinert. V. Symphyla. Familie Scolopendrellidae. Haase (^J findet die Spaltung der Gattung Scolopendrella in Scolopendrella und Scutigerella Ryder nicht motivirt. In Schlesien fand derselbe Scolopendrella nota- cantha Gerv. in Moysdorf bei Jauer, Altvater (Zuckmantel) nicht selten, in der Ebene (bei Wohlau, Canth) sehr selten, Scol. [Scutigerella] immamlata Gerv. recht häufig unter Moos, Blättern, bes. im Vorgebirge, bei Moysdorf, Canth, Fürstenstein, Landeck, im Riesengebirge bis zur Höhe von 800 m überall und Scol. [Scutigerella) nivea (Scop.) recht selten, nur bei Ustron. Berlese (') be- schreibt und bildet ab Scolopendrella immacidata Newp. (Padova), nivea (Scop.) und notacantha Gerv. Scolopendrella gratiae Ryder, ^«7osw?« Karlinski = nivea Scop., microeolpa Muhr = notacantha Gerv.; Berlese (^). D. Paläontologie. Scudder (2) läßt die Myriopoden aus Wasserbewohnern hervorgehen und ihr Erscheinen mit dem erstmaligen von Landthieren überhaupt zusammenfallen. Nach Scudder (', 2) fand man paläozoisch im Devon Archipolypoda 2, im Carbon Protosyngnatha 1, Archipolypoda 31, im Dyas Mus ? 4, mesozoisch im Lias 0, im Jura Chilopoda 1 ? [Geopkilus proavus Münst. = ? eine Annelide), in der Kreide Diplopoda oder Archipolypoda 1 ? [lulopsis cretacea Heer, Grönland) , tertiär im Eocän 0, im Oligocän Chilopoda 17, Diplopoda 23, im Miocän Diplopoda 1, im Pliocän 0 ; die tertiären Formen, ausschließlich recenten Ordnungen angehörend, entstammen hauptsächlich dem Bernstein, dem Süßwassergyps von Aix (Provence), der Braunkohle von Rott und den Green-River-Ablagerungen Nord-Americas. Keine recenten Vertreter haben die Ordnungen Protosyngnatha (Carbon) und Archipolypoda (Devon , Carbon und ? Dyas) , recente Vertreter die Chilopoda (Oligocän) und Diplopoda ("? Kreide, Oligocän und Miocän), ohne fossile Vertreter bleiben nur die recenten Pauropoda. 8. Hexapoda. I, Anatomie, Ontogenie etc. 125 Familie Polyxenidae. Phryssonotus nom. n. für Lophonotus Menge; Scudder p) p 731. Familie lulidae. Eojulus n. ohne die characteristischen Stacheln resp. Narben der Archipoly- poden, fragilis n. im Schleifsteinschiefer (Nöggerathienschiefer) der nntereu Radnitzer Schichten, im Bergbaue »Moravia« bei ßakonitz (Steinkohlenformation); Kusta p 4 Figg. 8. Hexapoda. I. Aiicatomie, Ontogenie etc. mit Ausschluss der Biologie. (Referent: Dr. Paul Mayer in Neapel.) Adolph, E., Die Dipterenflügel, ihr Schema und ihre Ableitung, in : Nova Acta Leop. Car . 47. Bd. p 271—314 T 24—27. [158] AmanS; P. C, Comparaisons des organes du vol dans la Serie animale. in: Ann. Sc. N. (6) Tome 19 Art. N». 2 p 9—222 T 1—8. [133] Arnold, Carl, Beiträge zur vergleichenden Physiologie, in: Mitth. Nat. Ges. Bern N». 979 — 1U03 1881 p 151—192. [138] BalbianI , G., 1. 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Plateau (*) ließ Insecten in einem Dunkelzimmer mit 2 Fenstern, einem ein- fachen und einem, welches das Licht durch Gitter von verschiedenen Formen einließ , fliegen und schloß so jede Beeinflussung der Versuchsthiere durch Farbe oder Geruch der Objecte aus. Sie flogen fast regelmäßig nach dem Fenster, welches das meiste Licht gab. Verf. zieht aus seinen Experimenten folgende, wie er selbst sagt, provisorische Schlüsse : »die Tagesinsecten bedürfen eines ziemlich starken Lichtes und wissen sich im Halbdunkel nicht mehr zurecht zu finden ; bei denen mit Facettenaugen bieten die Ocellen so geringen Nutzen , daß man sie als rudimentäre Organe auffassen darf; die Insecten mit Facettenaugen geben sich keine Rechenschaft von den Formunterschieden, die zwischen 2 erhellten Öff- nungen bestehen, und lassen sich täuschen theils von dem Übermaße der Licht- stärke, theils par les exces apparents de surface._ Kurz, sie unterscheiden die Form der Objecte nicht oder nur sehr schlecht«. Über das Auge der Hexapoden vergl. auch oben p 2 Carriere. F. Will (^) fand durch Experimente heraus, daß «bei den meisten Sinnen der Insecten die Grenzen der deutlichen Wahrnehmung sehr eng gezogen sind, daß indeß innerhalb dieser Grenzen das Unterscheidungsvermögen ein außerordentlich feines, weit über die Grenzen unserer eigenen Wahrnehmungsfähigkeit hinaus- gehendes ist«. So hören z. B. Käfer den Stridulationston ihrer eigenen Species auf eine Entfernung, in der ihn unser Ohr nicht mehr wahrnimmt. Der Ge- schmackssinn spielt mit Ausnahme der an specielle Pflanzen gebundenen Phy- tophagen, der Dipteren, Wespen, Bienen, Hummeln und Ameisen, nur eine sehr untergeordnete Rolle. Er ist aber auch individuell verschieden. Die Dauer des Geschmackseindruckes scheint eine ziemlich lange zu sein. Der experimentelle Nachweis von dem genauen Sitz des Geschmacksorgans gelang Verf. nicht ; Ver- suche zur Bestätigung der Josephschen Beobachtungen über Farbänderung des Protoplasmas in dem Bläschen unter den Geschmacksbechern (s. unten) bei Ein- wirkung von Bitterstoffen etc. gaben zweifelhafte Resultate, dagegen schwoll dieses Plasma bei schwachen Inductionsströmen deutlich an. — Verf. bespricht noch kurz den Einfluß des Geschmacksvermögens auf die Existenz der Insecten und wendet sich dann zur Erörterung des anatomischen Baues der betref- fenden Organe bei den Hymenopteren, vor allen bei Vespa Q und Arbeiter (wo sie dieselbe Form haben), dann aber auch bei Ichneumon, Atta, Apis, Bombus, Osinia und Tenthrediniden. (Die Schnitte wurden meist durch eben ausgeschlüpfte Imagines mit noch weichem Chitin gemacht.) Die Organe haben ihren Sitz an der Spitze und Basis der Zunge (event. auch an der Spitze der Paraglossen) sowie an der Unterseite der Maxille. Die an letzterer und an der Zimgenbasis sind Becher oder Grübchen im Chitin, aus denen der Axencylinder frei zu Tage tritt, und die mit Speichel übergössen werden können, mithin alle Bedingungen für ein Geschmacksorgan erfüllen. Die Zuleitung des Speichels auf der Oberfläche be- sorgen besondere Reihen von Haaren. Der Axencylinder »verliert sich basalwärts in ein mit hellem Protoplasma (?) gefülltes Bläschen, dessen unteres Ende 5-7 große Zellen mit deutlichen helleren Kernen enthält (Sinneszellen)«. Der Zusammen- hang mit den Nerven der Zunge wurde nicht sicher ermittelt. Nach innen von diesen Endapparaten, also nicht mehr im Bereiche der Epidermis, findet sich eine Schicht acinöser Drüsen, deren Ausführgänge wahrscheinlich auf der Haut zwi- schen Borsten münden, welche seitlich eine Rinne tragen und auch als Schutz- borsten für die Geschmacksorgane dienen. Bei den Ameisen, für welche Verf. die Angaben von Meinert und Forel durch seine eigenen Untersuchungen an Atta bestätigt, sind ähnliche Becher nicht nur auf der Zungenbasis, sondern auch auf der Zungenspitze angebracht; dagegen trägt die Zungenspitze der übrigen Hy- menopteren an Stelle der Becher terminale Sinnesborsten, die aber aus Analogie 8. Hexapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 131 ebenfalls als Geschmacksorgane zu betrachten sind, zumal offenbar das Thier mit der Zungenspitze die aufzunehmende Nahrung vorher prüft. Auch sind diese Borsten durch eine besondere Platte vor Insulten geschützt, können daher keine Tastorgane sein. Jede Borste birgt in ihrem Inneren einen Schlauch, der mit 5-7 Zellen erfüllt ist und mit dem Zungennerv mittels eines feinen Nervenfadeus in directer Verbindung steht. [Wegen der Einzelheiten vergl. das Original.] Bei den Tenthrediniden sind die Becher zwar wenig zahlreich, dafür aber etwa 3 mal so groß wie bei den übrigen Hymenopteren. Ihre Anzahl ist bei Ameisen starken individuellen Schwankungen unterworfen. Für die Apiden haben Kräpelin und Wolff bereits einige richtige Angaben gemacht ; hier sind Becher auf den Labial- tastern vorhanden. An anderen Stellen der Mundtheile oder in der Mundhöhle selber fehlen Geschmacksorgane bei allen Hymenopteren durchaus; namentlich ist das von WolfF dafür gehaltene »Gaumensegel« kein solches, wie denn überhaupt die Gruben in der Pharynxwand zwar feine blasse, aber geschlossene Haare tragen, mithin nicht zur Perception des Geschmackes dienen können. Plateau p) stellte an Coleopteren und Orthopteren Versuche über die Function der Palpen an, indem er die Thiere sowohl im normalen Zustande als auch nach Abschneidung der Palpen beobachtete und im letzteren Falle die Vorsicht ge- brauchte, sie nach der Operation einige Tage hungern zu lassen. Die Resultate waren : Beim Kauen sind beide Palpenpaare unthätig. Die Entfernung des einen von ihnen oder auch beider beeinträchtigt das Aufspüren, Ergreifen und Verzehren der Nahrung durchaus nicht und schwächt ebensowenig das Geruchsvermögen. Nach Grab er, welcher die Wirkung von Riechstoffen auf Insecten unter- suchte, sind die Nervenenden der Palpen von Grylhtalpa »schmale vielkernige Schläuche, aus denen eine in die Cut. -Anhänge eintretende feine Chorda hervor- geht«. Durch Experimente an Formica rufa und Musca caesar ergibt sich, daß diese außer mit den Fühlern auch mit anderen Theilen Kunde von gewissen riechen- den Substanzen (Rosenöl resp. faules Fleisch) erlangen, während Aphodius den Dünger ausschließlich mittels der Fühler zu riechen scheint. Ebenso empfindet Süpha die Asa foetida nur mit den Fühlern, Rosmarinöl dagegen auch noch mit andern Körperstellen, obwohl ebenfalls weniger deutlich, als mit den Fühlern. Bei Periplaneta sind die Palpen gegen Rosenöl bedeutend empfindlicher als die Antennen , bei Lucamis reagiren beiderlei Organe auf die meisten Riechstoffe gleich stark. Enthauptete Periplaneta, von denen ein Exemplar noch 20 Tage lebte, werden von Aceton und Karbolsäure weit mehr afficirt, als normale; hierbei spielen sowohl die Aftergriffel als auch die Endtheile der Beine eine Rolle als Perceptionsorgane. Überhaupt scheinen stärkere Riechstofi'e , da sie fast durch- gehend eine abstoßende Wirkung auf die Insecten hervorbringen, weniger eine Geruchsempfindung, als eine schmerzhafte Erregung des Gefühlssinnes hervor- zurufen. Gegen Wärmeunterschiede ist der Rumpf von Periplaneta auffallend unempfindlich. Krause konnte weder bei Perijdaneta noch bei Bomhus Nervenfasern durch die Haut der Speicheldrüsenacini zu den einzelnen Zellen treten sehen (gegen Engelmann; vergl. Bericht f. 1882 U p 120); vielleicht liegen hier Nervenend- platten vor. Nach F. Müller geht die Entwicklung der Fühler bei den Trichopteren viel- leicht und bei allen Insecten wahrscheinlich in derselben Weise vor sich wie sie Verf. vor Jahren für die Termiten angegeben hat , nämlich in der Art , daß sich am Grunde des 3. Gliedes stets neue abschnüren. Nach Barthelemy existirt bei den Hexapoden eine allgemeine Larvenform , die Raupe (chenille), deren Mundtheile mit denen des Nauplius Ähnlichkeit haben; so besitzen z. B. die Mandibeln bei der Raupe von Sphinx atropos 2 bis 3gliedrige 9* 132 Arthropoda. Taster u. s. w. Der Rüssel der Lepidopteren wird von den Mandibeln gebildet. — Hierher auch *Chatin (3). H. Dewitz ('^) bleibt dabei, daß nicht Luftdruck, sondern ein Secret die Insecten zum Klettern an glatten senkrechten Flächen befähige [vergl. Bericht f. 1884 II p 4]. Das Secret braucht nicht bei allen Insecten klebrig zu sein, bei Mtisca ist es jedoch entschieden dickflüssiger als Wasser oder Öl (gegen Rombouts) und auch nicht fettiger Natur. Eine todte Fliege kann man (auch unter der Luft- pumpe) zum Anhaften mit nur Einem Beine bringen, ja sie verträgt eine Belastung mit bis zu 0,15 g. Die Saugnäpfe des (J^ von Dytiscus wirken in der That als solche. Dahl ändert in einigen wesentlichen Punkten seine frühereu Ansichten [vergl. Bericht f. 1884 II p 149] und hält jetzt die Flüssigkeit, welche durch das Chitin durchschwitze, für das Secret von Drüsen, findet auch mit Rombouts den Grund für das Haften der Insecten an glatten Flächen in der Capillarattraction. »In den verschiedenen Insectenordnungen mit Ausschluß der Käfer fungirt die umgewandelte Matrix als Haftdrüse und zwar ist nicht jede Zelle eine selbständige Drüse , sondern der ganze umgewandelte Theil bildet gewissermaßen eine einzige Drüse, Sie liegt entweder über der Fußsohle, die in diesem Falle als Haftorgan fungirt (Orthopteren), oder sie tritt in 2 Haftläppchen hinein (Dipteren), oder endlich sie gehört der Sehne des Krallenbeugers an und liegt deshalb im letzten Fußgliede, während als Haftorgan ein Läppchen zwischen den Krallen vorhanden ist (Hymenopteren und Lepidopteren)«. Beiden Coleopteren münden die Haft- drüsen »in den Canal der Hafthaare. Dieselben sind aus Bindegewebszellen entstanden und der Matrix eingelagert. Nur die sexuellen Haftdrüsen gewisser Käfergruppen sind aus der Matrix selbst entstanden.« Die großen Haftapparate von Dytiscus (J^ werden an ihrem weichhäutigen Rande mit dem Secrete der Haftdrtisen eingefettet. [Nach der Beschreibung, welche Verf. von ihnen und ihrer Thätigkeit entwirft, haben sie als Saugnäpfe zu wirken, was Verf. jedoch nicht ausspricht.] Im Principe lassen sie sich auf die gewöhnlichen Hafthaare der Coleopteren zurückführen. Diese sind »umgewandelte Chitinhaare, deren Endtheil erweitert ist. Am Grunde sind sie röhrenförmig und mit einem äußerst lockeren Chitingewebe gefüllt ; im Endtheil wird die Wandung zu einer äußerst feinen Membran, die sich wenig scharf gegen die hier bedeutend dichtere, aber doch noch sehr leicht und vollkommen gleichmäßig durchtränkbare Innen- masse abgrenzt«. Sie sind demnach weder hohl, noch an der Spitze offen (ge- gen Dewitz). also muß das in sie eingetretene Drüsensecret durch sie hindurch- schwitzen. — Neben den Ilaftdrüsen finden sich bei den Coleopteren auch noch 1-2 Arten Hautdrüsen, die stets frei auf der Oberfläche ausmünden. Bei Saperda hat ihr Ausführgang in seiner Matrix einen Kern, somit ist jede Drüse zweizeilig ; bei Rhagonycha entsenden sie feine Ausläufer, die als Anfänge von Ausfuhrcanälen zu betrachten sind ; bei Feronia gibt es außer den gewöhnlichen Hautdrüsen noch solche ganz ohne Gang ; bei Dytiscus sind sie außerordentlich stark entwickelt und helfen ofi'enbar bei der Einfettung der Saugnäpfe. H. Dewitz (■^) wahrt Dahl gegenüber seine Priorität, macht nochmals darauf aufmerksam, daß die Sohle der Locustiden aus Röhrchen bestehe, und gibt an, daß die Tarsalhaare bei Coleopteren theilweise die Öffnung genau apical, theilweise seitlich dicht vor der Spitze haben ; die Ränder der Öfi'nung legen sich wahrscheinlich an einander, wenn kein Secret durchtritt. Lendenfeld hält seine Theorie über den Flug der Insecten [vergl. Bericht f. 1881 II p 127] aufrecht und macht darauf aufmerksam, daß Fliegen, bei denen durch Eintauchen in Terpentinöl Starrkrampf erzeugt wurde, die Flügel ver- drehen; mithin seien die Veränderungen in der Stellung der Flügel beim Fluge 8. Hexapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 133 nicht aiif den Widerstand der Luft, sondern auf Muskelthätigkeit zurückführen. Vivipare Fliegen gebcären unter dem Einflüsse des »Insecticide« (wesentlicher Be- standtheil : aromatisches Öl von Pyrethrumblüthen), welches gleichfalls Tetanus erzeugt, stets ihre Larven, die selber nicht wesentlich unter dem Mittel leiden. Amans beschreibt sehr eingehend und unter Anwendung einer neuen Nomen- clatur Skelett und Musculatur der Flügel und des Thorax, soweit sie beim Fluge Verwendung finden [vergl. Bericht f. 1884 II p 152]. Er untersuchte Aesc/ma, Panor^Ja, Meconema, Acridium, Sirex, Xylocojja, Ctcada, Saiuniia, S])hi7ix, Volu- cella, Tipiila, Hydrophilus , Melolontha , Cetonia und andere Coleopteren. Eine Theorie des Fluges gibt er nicht, sondern liefert am Schlüsse der Arbeit nur eine kurze Darstellung der »Machine-Insecte«, die aber wegen der zahlreichen Termini technici aus der Mechanik hier nicht wiedergegeben wird. PancritillS wiederholt in ausführlicher Darstellung seine früheren Angaben [vergl. Bericht f. 1884 II p 151] über die Flügelbildung. Die aufge- knäuelten Tracheen haben einen Spiralfaden (gegen H. Landois). Die körnigen Zellmassen entstehen wahrscheinlich durch eine Wucherung der Peritonealhaut der an die Flügelanlage tretenden Trachee. Gegen Ende des Larvenlebens bilden sich im Hohlräume der Flügel ectodermale Querstränge, welche die Verschiebung der beiden Blätter desselben verhindern und den Tracheen als Suspensorien dienen. Die Flügelanlage wird auch bei den Museiden ein einschichtiges Epithel sein. Phylogenetisch sind die Flügel nicht von Tracheenkiemen, sondern (mit Fritz Müller und Anderen) von Ausstülpungen (Schutzdecken ?) der betreifenden Segmente abzuleiten, in die erst nachträglich Tracheen hineinwucherten. — Mus- keln von Ilexapoden, vergl. oben p 66 v. Limbeck. Frenzel bespricht zunächst den Verdauuugstractus der Hexapoden im Allge- meinen und geht dann auf den Mitteldarm, besonders auf sein Epithel, ein. Er untersuchte etwa 60 Arten aus den verschiedensten Ordnungen sowohl frisch als auch nach Härtung mit Sublimat (80% Alkohol mit Sublimat halb gesättigt, auf je 1-2 Kubikcent. 1 Tropfen conc. Salpetersäure). Bei Gryllotalpa soll der ganze Mitteldarm nur aus einem Paare Ausstülpungen und einem »winzigen ge- fiederten Anhange« am Ende des Vorderdarmes bestehen, worauf sich sofort der chitinige Enddarm ansetzt ; in diesen münden also die Malpighischen Gefäße nicht am Anfang, sondern in der Mitte ein. [Vergl. hierzu unten p 145 Korotnef.j Ganz allgemein folgt am Mitteldarm von innen nach außen auf das Epithel zu- nächst eine Schicht Bindegewebe, und zwar entweder als »kräftige , stark licht- brechende, geschlossene Membran« (Tunica propria) ohne zellige Structur oder als Netzwerk von Faserbündeln mit Kernen dazwischen ; in letzterer Form scheint es auch bei HydropUlus u. A. die Ringmusculatur zu durchflechten. Die nun folgende Muscularis besteht meist aus einer inneren Lage von Ring- und einer äußeren von Längsmuskeln in wechselnder Mächtigkeit [Einzelheiten s. im Original] ; sie um- faßt aber nur den Darmschlauch selber, nicht auch oder doch nur ganz wenig seine Ausstülpungen. Eine besondere Serosa nach außen von der Muscularis fehlt. Das Epithel des Mitteldarmes ist entweder in glatter Lage oder in Zotten an- geordnet; seine Zellen (bis 0,150 mm im Durchmesser) können durchaus gleich- artig sein oder es lassen sich 2 Formen von ihnen unterscheiden. Bei manchen Arten nämlich finden sich am Grunde zwischen den Zotten Drüsenzellen zu »Kryp- ten« (wie sie zuerst Basch bei Blattei genannt hat) gruppirt, deren feiner Ausführ- gang zwischen den anderen Epithelzellen hindurch bis an das Darmlumen reicht; bei den Raupen hingegen sind die Schleim- und gewöhnlichen Epithelzellen (Cylinderzellen) vermischt nebeneinander angebracht. Sämmtliche Zellen tragen auf ihrer freien Fläche einen Saum von feinen, mitunter sehr langen (bis 0,045 mm) Härchen, der früher irrig als poröse Cuticula angesehen worden ist und wohl dazu 13^ Arthropoda. dient, die Zellen vor Berührung mit der Nahrung zu schützen und »einer sich etwa einstellenden Selbstverdauung hindernd in den Weg zu treten«. Was Schie- menz [vergl. Bericht f. 1SS3 II p 110] als oberste Schicht der Intima auffaßt, ist wahrscheinlich geronnenes Pepton oder Verdauungssecret. Das enzymatische Secret in den Zellen, das Verf. sehr weitläufig beschreibt, ist bei vielen Arten mehr oder weniger gefärbt, und zwar meist gelb ; oft sind es ;feine staubartige Granulationen, bei andern Insecten stark lichtbrechende Kugeln, die mitunter das Plasma fast völlig verdrängen und den Kern verdecken, oder auch Krümel oder zu Reihen vereinigte Körner etc. [Die zahlreichen Einzelheiten s. im Original.] Die Schleimzellen haben in ihrem Secretraume mitunter farbige Krystalle ; jung sitzen sie der Tunica propria des Epithels auf, später hingegen rückt die mächtig anschwellende Secretblase nach dem Darmlumen zu und zieht dabei das Plasma strangförmig aus. Die Regeneration der Schleim- sowohl wie der übrigen Zellen, welche bei der Secretbildung zu Grunde gehen, erfolgt durch Nachschub junger Zellen vom Grunde der Epithelschicht her. Hier nämlich findet Kern- theilung statt, und zwar eine indirecte lediglich in den Zellen der Krypten , sonst ausschließlich eine directe, amitotische. Mithin istKaryolyse im Mitteldarme eine seltene Erscheinung. Bei der Metamorphose von Apis werden die Epithelzellen im Mitteldarme der Puppe abgestoßen und zunächst durch ähnliche Zellen ersetzt; erst gegen Ende der Puppenruhe bildet sich das Epithel der Imago. Bei der Larve , die sich zur Verpuppung anschickt , steht das Rectum bereits mit dem Mitteldarme in Verbindung, denn letzterer wird durch den After von allen Nah- rungsresten entleert. Zugleich treten an Stelle der auffallend großen Zellen ähn- liche, aber viel kleinere. Auch bei den Lepidopteren ist die Umwandlung des larvaleu Epithels in imaginales sehr complicirt. Vor der Verpuppung gibt die Raupe ebenfalls alle Nahrung von sich ; dann verschwinden zuerst die Schleim- zellen auf immer, verflüssigt sich ferner das gelbe Secret in den Cylinderzellen zu rothen Tropfen (mit oder ohne Krystalle darin) und werden hierbei die Zellen selber abgestoßen, aber wohl immer durch neue ersetzt. Gegen Ende der Puppenzeit ist der Mitteldarm ganz mit Zelltrümmern und rother Flüssigkeit erfüllt ; dieser ge- sammte Inhalt wird [wie bekannt] von der Imago entleert. Kurz vor dem Aus- schlüpfen ensteht denn auch das imaginale Epithel. — Function der Mitteldarm- zellen. Das in ihnen aufgiespeicherte feste Secret kann nicht, wie es früher wohl geschehen ist, als die von ihnen aus dem Darme aufgenommene, resorbirte Nah- rung oder als Fett betrachtet werden; ferner gehen sie bei der Secretion zu Grunde. Ob sie aber auch resorbiren oder ob nicht, namentlich im Falle von Gryllotaljya, dies der Enddarm thut , bleibt einstweilen unbekannt. Die sämmtlichen Aus- stülpungen des Darmes, mit Ausnahme der Malpighischen Gefäße und der Speichel- drüsen, »tragen ein mit diesem ganz übereinstimmendes Epithel« ; da nun aber die Zellen der Darmwandung keine Gallenpigmente liefern , so haben , wie Verf. wiederholt [vergl. Bericht f. 1882 II p 130], «die Insecten weder ein leberähn- liches Organ noch ein gallenähnliches Excret.« Spermatogenese bei Hexapoden, vergl. oben p 7 GilSOn. A. Brandt macht darauf aufmerksam, daß er »bereits vor einem Decennium die Speisung des Insectendotters mit fester, von den Epithelzellen stammender Kost genügsam hervorgehoben habe.« Nach L. Will sind die jüngsten »0 ob lasten« [vergl. Bericht f. 1884 II p 154] im Endfache der Eiröhreu von Nejxi und Notonecta nicht größer als die Kerne im Endfaden und stammen wahrscheinlich von ihnen her; allmählich wachsen sie und theilen sich auch; erst wenn sie einen beträchtlichen Umfang erreicht haben, tritt der größte Theil ihrer chromatischen Substanz aus und zerfällt in eine Menge winziger Kerne, die zu den Kernen des Follikelepithels werden, während der 8. Hexapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 135 gleichzeitig austretende Kernsaft des Ooblasten zum Zellenleibe dieser Kerne wird. Der Rest der chromatischen Substanz und des Kernsaftes bildet das Keim- bläschen. Die Ooblasten liegen anfänglich in einer »hellen gemeinsamen plas- matischen Grundsubstanz, dann aber treten in ihrer Umgebung Höfe von dunklerem Protoplasma auf und stellen die erste Anlage des Plasmaleibes des jungen Eies dar«. Entweder bleiben die Höfe nun beständig isolirt und werden nur von dem eingeschlossenen Ooblasten aus mit dem Follikelepithel umkleidet, oder sie ver- schmelzen zunächst mit einander zu einer Plasmamasse, die sich nachträglich wieder in die einzelnen Eier gliedert, indem von der Wandung des Endfaches her die Zellen des Follikelepithels hineinwandern. Daher stammt Letzteres durchaus nicht immer von demselben Ooblasten ab, den es später einschließt; anfänglich sind an ihm auch noch keine Zellgrenzen wahrnehmbar. Die jungen Eier stehen mit dem Endfache durch plasmatische Verbindungsstränge in Connex [gegen Kor- schelt, vcrgl. Bericht f. 1884 H p 169], die später von den Epithelzellen resorbirt werden. Mit dem Wachsthume dos Eies rückt das Keimbläschen an die Peripherie, verliert seine Membran und läßt seinen Inhalt in das Plasma eintreten; gleichzeitig liefern die Follikelzellen, die inzwischen sehr dick geworden sind , den Dotter, indem ihre Kerne zerfallen und die chromatische Substanz derselben unter che- mischer Umwandlung sich direct zu Dotterköruchen gestaltet. Wahrscheinlich bleibt aber die periphere Schicht des Epithels bestehen und gibt dem Chorion seinen Ursprung. — Der «Ooblast« trägt, da er in der That das Ei aufbaut, sei- nen Namen mit Recht ; das Follikelepithel gehört, als von ihm abstammend, mit zum Ei, demnach ist das junge Ei ein Zellcomplex; das reife Ei hingegen ist »nichts weiter, als eine vom Chorion umfaßte, in eine Grundsubstanz eingebettete Masse von Dottermolekeln und läßt keine Spur mehr von einer zelligen Structur erkennen.« Es ist also »weder eine Zelle, noch ein Zollencomplex, sondern das Product der Thätigkeit mehrerer Zellen«. — Gegen diese »auffallenden« Resultate wendet sich v. Wielowiejski und bezeichnet viele von Will's Bildern als Kunst- producte. An Pyrrhocoris sah er selbst Folgendes. Die Eier sind echte ein- kernige Zellen, bilden sich wahrscheinlich bereits im Embryo oder in frühen Larvenstadien und enthalten anfangs in ihrem Kerne Chromatin, das sich wie das aller übrigen Zellen des Thieres mit Methylgrün färbt und erst viel später ver- schwindet. Bei der reifenden Imago liegen diese jungen Eier unmittelbar nach hinten von der Endkammer und senden in sie hinein einen Dottergang, der mit »feinen pinselförmigen Fädchen« zwischen die Wandungszellen derselben tritt, »offenbar um die von denselben bereiteten Ernährungssäfte aufzunehmen«. Mithin sind diese Zellen einfach Dotterbildungszellen. Das Follikelepithel entstellt durch Wucherung des Epithels der Eiröhre, welche eine Menge ganz typischer Kern- theilungsfiguren zeigt, die Will übersehen zu haben scheint. Eine Verschmelzung von jungen Eiern hat Verf. nie beobachtet, ebensowenig eine Betheiligung des Follikels an der Dotterbildung. — Auch Korschelt spricht sich, obwohl in manchen Einzelheiten weniger bestimmt, gegen Will aus. Bei Decticus, Dytiscus, Bombus, Mtisca, NejHi u. s. w. »nehmen die Zellenelemente der Eiröhre, d. h. Ei-, Epithel- und Nährzellen durch directe Umwandlung der Elemente der Endkammer ihren Ursprung und lassen sich die letzteren wiederum bis in die indifferenten Elemente des Endfadens verfolgen«. [Eingehenderes Referat nach Erscheinen der ausführlichen Arbeit.] Schneider {^) untersuchte die Entwickelung der Genitalien [vergl. Be- richt f. 1883 n p 105] an »frischen unveränderten Präparaten« oder »höchstens« mit »sehr verdünnter Essigsäure« (»Querschnitte sind überflüssig«) und gelangte dabei zu ganz neuen Resultaten. Die erste Anlage besteht aus einer Muskelfaser, die sich von einem Elügelmuskel des Herzens abzweigt , aber bei den viviparen 136 Arthropoda. Cecidomyien »aller Stnictur entbehrt« [vergl. auch am Schlüsse des Referates die Angaben über Cocciis]. In ihrer Mitte »entsteht eine Anhäufung von Kernen«, die eigentliche Geschlechtsanlage; auch in dem vorderen Theil [»Müllerscher Faden«) und dem hinteren Abschnitt (»primärer Ausführgangy) »finden sich Kerne ein«. Verf. unterscheidet von diesen zweierlei Formen, größere »kugeligea imd kleinere »blasige«; beide können sich theilen. Aus kugeligen, aber durch gegen- seitigen Druck mitunter polyedrischen Kernen, und nicht aus Zellen, bestehe das Epithel der Eiröhren und der Ausführgänge; zur Constatirung dieser »wegen ihrer Einfachheit schwierig zu erkennenden Verhältnisse« empfiehlt Verf. das Zerreißen frischer Ovarien von Hemipteren. Entweder geht nun die Geschlechtsanlage un- mittelbar in das Geschlechtsorgan über, oder es erfolgt vorher noch eine besondere Diflferenzirung. Im ersteren Falle (vivipare Cecidomyien, Collembola, Campodea^ Coccus^ Lecankim, Aspidtotus, Diptera (J^) umgeben sich die kugeligen Kerne mit Plasma und werden so zu Eiern resp. Spermatoblasten, im letzteren entstehen bei der »Hauptmenge« der Formen in der Anlage »innerhalb des kernhaltigen Proto- plasma länglich runde Körper, welche sich früh durch eine Membran abgrenzen, die Ei- und Samenröhren. Dieselben stehen ungefähr senkrecht zurLängsaxe der Geschlechtsanlage. Eine ähnlich zusammengesetzte strangförmige Anhäufung bildet sich am medialen Rande der Anlage aus, der künftige secundäre Aus- führungsgang, in welchen später die Eiröhren münden«. »Die Hülle der Genital- anlage bleibt«, das »zwischen ihr nach Bildung der Ei- und Samenröhren übrig- bleibende Blastem legt sich als eine Zellschicht über die Eiröhren« und bildet den Peritonealüberzug , der aber im (^ immer und bei vielen Hemipteren und den Pseudoneuropteren auch im 2 resorbirt wird. Ein anderer Theil des Plasmas »wandelt sich um in Specialendfäden, welche die blinden Enden der Geschlechts- röhren mit dem Müllerschen Faden verbinden« ; auch diese gehen sammt dem letzteren bei den (^f wieder zu Grunde und daher sind auch die Hoden rund, die Eiröhren spitz. Die Genitalhülle erhält sich als geschlossener musculöser Sack nur bei den Dipteren und dient nach dem Zerfalle der Geschlechtsröhren als Ei- behälter, bei den Blattiden und Orthoptera saltatoria wird sie zu einer netzartigen Membran, in allen übrigen Fällen wird sie dagegen spätestens während des Puppenstadiums völlig resorbirt. Der secundäre Ausführgang tritt auf und erhält sich bei den Orthopteren, Thysanuren, Thysanopteren und Hemipteren, tritt auf und schwindet wieder bei den Dipteren (Ausnahme Scenojmius) , und wird über- haupt nicht gebildet bei den Coleopteren, Hymenoptcren, Neuropteren und Lepi- dopteren. Der primäre Gang mündet nie direct nach außen, vielmehr nur in eine Einstülpung der Epidermis (»Heroldscher Gang«); diese ist von Hause aus unpaar, [gegen Palmen; vergl. Bericht f. 1884 II p 153] und setzt sich im Q mit den zu einem unpaaren Mittelstücke verschmolzenen primären Gängen in Verbindung, treibt dagegen beim (J' vieler Hexapoden paare Blindsäcke, in welche die primären Gänge getrennt münden. Eibildung. »Das Ei stammt weder von Epithel- noch von Dotterzellen, sondern von dem ursprünglichen Blastem der Geschlechtsanlage ab«. Wo keine Betheiligung von Dotterzellen stattfindet, »son- dern sich die Kerne und das Protoplasma der Eiröhren in 2 Schichten« ; die äußere mit kleineren Kernen bildet das Epithel des Eierstocks , die innere mit größeren Kernen liefert die Eier. Sind dagegen besondere Dotterzellen vorhanden, so können diese entweder in einem Endfache liegen oder es existirt für jedes Ei ein besonderes Dotterfach. »Ein Endfach besteht anfangs aus demselben Blastem wie die übrige Eiröhre. Dann werden die Kerne im Innern größer, in der oberfläch- lichen Schicht bleiben sie kleiner . . . Dann sondert sich im Endfach die Epithel- schicht von dem Dotter [woher dieser?]. Letzterer kann iingetheilt bleiben oder sich in Zellen einschnüren, welche einen oder mehrere Kerne enthalten«. Die Eier 8. Hcxapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 137 bleiben mit dem Endfache durch je einen Stiel in Verbindung. Die Dotterfächer sind entweder einzellig [Chironomus, Forficuliden) oder mehrzellig. Bei C. entsteht »in jedem Eifach zunächst die eine Dotterzelle, welche mit einer Epithelschicht umgeben ist. . . . Nun löst sich einer der Kerne nebst Protoplasma der Epithel- schicht als umschriebene Zelle los, ist aber an einer kleinen Stelle mit der Dotter- zelle verbunden. Diese kleinere Zelle bildet das Ei«, jedoch ist «der epitheliale Character der Eizelle, wie er bei den Dipteren, Hemipteron und Coleopteren her- vortritt, ein unwesentlicher«. Bei Labidura mit ebenfalls einzelligem Dotterstockc bilden Ei- und Dotterzelle zunächst eine einzige Zelle mit 2 Kernen . Die Lecithin- körper und Protoplasmaköruchen im Dotter der Eier wandern nicht aus den Epithelzellen, aber auch nicht aus den Dottcrzellen, in sie hinein. Überhaupt geht der Inhalt der Dotterzellen nicht direct in das Ei über, sondern ))scheint in den allgemeinen Kreislauf aufgenommen zu werden«. Die Epithelzellen gehen erst bei der Eiablage zu Grunde. Ganz allgemein wird das Keimbläschen früher oder später unsichtbar; dieser Vorgang leitet das Auftreten einer Kernspindel ein. Samenbildung. Bei den Insecten mit terminalem Dotterstocke werden «die- selben Zellen, welche in der Eiröhre Dotterzellen darstellen, in der Hodenröhre zu Hodenfollikeln«, in deren Innerem in bekannter Weise das Sperma entsteht. Da nun bei den Insecten ohne Dotterstöcke die gleichen Zellen in den Q. zu Eiern, in den (f zu SamenfoUikeln werden, so sind die Dotterzellen als »männliche Zellen« zu bezeichnen, und so sind auch die weiblichen Insecten entweder »getrennten Geschlechtes« oder »Zwitter«. — Von den zahlreichen Einzelheiten mögen noch folgende erwähnt werden. Die Darstellung der ersten Embryonalstadien von Ceci- (lomyia weicht insofern von der bekannten ab, als Verf. die Furchungs- und sogar die Blastodcrmzellen für Kerne ansieht ; ebenso schildert Verf. die Eibildung bei Macrotoma völlig anders, als es Sommer thut [s. unten p 143], und wirft die Frage auf, ob die »merkwürdigen gewundenen algenartigen Fäden« nicht Parasiten seien. Für Cam2)oclea schließt er sich im Wesentlichen Grassi [vergl. Bericht f. 1884 II p 157] an. Bei Cocais sind die jüngsten Genitalanlagen Schläuche mit zweierlei Kernen und gehen nach vorn in kernhaltige Fäden ohne Muskelstructur über, deren Anheftung Verf. nicht auffand. Das Ei entbehrt der Mikropyle. Bei den Dipteren mit mehrzelligen Dotterfächern »ist nicht blos die Genitalhülle selbst mit quergestreiften Muskelfasern durchsetzt , sondern auch quer durch den Eierstock gehen in verschiedenen Richtungen quergestreifte Muskelfasern von einer Seite der Genitalhülle zur andern». Bei Chironomus plumosus geschieht die erste Anlage des Eierstocks im Sommer anders als im Winter. Der secundäre Ausführgang ist in der Larve vorübergehend voll einer rothen Flüssigkeit, ebenso die Hoden. Der musculöse Endfaden ist bei der Imago ganz verschwunden. Bei Coccus findet sich in der Nähe der Genitalanlage ein »Zellkörper« [Pseudovitellus?], der zeitlebens bestehen bleibt; eine andere Art, die ebenfalls persistirt, kommt bei Acanthia vor, eine dritte Form bei den Larven von Thrvps. Balbiani {}] führt seine vorläufige Mittheilung über die Polzellen bei CÄmwo- mus spec. [vergl. Bericht f. 1882 II p 131] weiter aus und verbreitet sich zugleich kurz über die gesammte Embryonalentwicklung von C. , soweit sie sich am lebenden Ei verfolgen läßt. Hierin stimmen seine Resultate im Allgemeinen mit denen Weismanns überein , während er die von Jaworowski und von Schneider (s. oben) über die Anlage der Genitalien einfach als falsch bezeichnet. — Das abge- legte befruchtete Ei läßt ein Blastem und einen Dotter unterscheiden und füllt zunächst noch die Schale gänzlich aus, zieht sich aber dann an den Polen davon zurück und läßt am hinteren 2 Polzellen austreten, welche sich 2 mal theilen. Diejenigen Autoren, die mehr als 8 beobachteten, haben wohl die gleichzeitig bei der Contraction des Eiinhaltes ausgepreßten »Plasmatröpfchentf mitgezählt; letztere 138 Arthropoda. sind aber kernlos. Auch am vorderen Pole erscheinen solche Tröpfchen, und eins von ihnen scheint Weismann [vergl. Bericht f. 1882 II p 132] zur Annahme eines Richtungskörperchens veranlaßt zu haben. Im Ei lassen sich durch Compression ein vorderer und ein hinterer Kern sichtbar machen. Wenn später der Eiinhalt sich wieder bis an das Chorion ausdehnt, so werden die Polzellen in das Innere gedrängt; die Einzelheiten dieses Vorganges sind aber Verf. unbekannt geblieben. Darauf werden aus den 8 durch Verschmelzung (ebenfalls nicht beobachtet) 4 ; diese lagern sich zu je 2 rechts und links vom Hinterdarme und erhalten durch endogene Kernbildung eine jede 4 Kerne. In der Larve erst kommt es dann zur Vermehrung der Zellen, indem um jede Mutterzelle rosettenförmig Tochterzellen hervorknospen, sodaß jede derartige Zellgruppe im Q dem Inhalte einer End- kammer entspricht. Hierbei scheinen die peripheren Zellen durch Abplattung das Epithel des Ovariums zu liefern ; lauge vorher jedoch sind schon der vordere und hintere Endfaden entstanden. Die Bildung des Hodens verläuft genau in der gleichen Weise, nur ist die Anzahl der Zellrosetten hier eine viel größere; sie ent- sprechen hier wohl den Spermatogemmen. — Der Mitteldarm ist auch bei 5 Tage alten Larven noch geschlossen und bricht später zuerst nach vorn, dann auch nach hinten durch. Camerano führt aufNeotenie, d.h. auf Verlängerung des Larvenlebens [vergl. Bericht f. 1884 IV p 127] viele Erscheinungen aus der Entwickelung der Hexa- poden zurück, so z.B. die Fortpflanzung bei Mias/or, die larvenähnlichen Q, die flügellosen Orthopteren und Rhynchoten u. s. w. Vielleicht ist auch der sociale Polymorphismus eine Folge davon. Darum ist auch bei classificatorischen Ar- beiten der Character der Metamorphose weniger zu berücksichtigen , als bisher geschehen. Arnold untersuchte an verschiedenen Insecten die Wirkung von Kohlensäure, Stickoxyd, Kaliumsalzen, Curare und Coniin sowie die Phänomene der Er- stickung und Wiederbelebung u. s. w. Kohlensäure ist bei weitem nicht so giftig wie bei den Vertebraten. Curare, in die Leibeshöhle injicirt, lähmt central ; bei Reizung der Beine zeigen sich gekreuzte Reflexe. Auch Coniin lähmt nur central. Bei der Wiederbelebung erstickter Thiere durch Liegenlassen an der Luft treten gleichfalls gekreuzte Reflexe auf, aber bei Gryllotalpa nicht an den Vorderbeinen, weil diese nicht zum Gehen, sondern zum Graben benuzt werden. Von Lampyris leuchten auch die Eier; es gelang auch, den Käfer selbst in absolut sauerstofF- freiem Wasserstoff auf elektrischen Reiz zum Leuchten zu bringen. Passerini gelangte an Hymenopteren, Lepidopteren, Orthopteren und Coleo- pteren über den Hungertod zu folgenden Schlüssen. Die Insecten können bis ^ji ihres ursprünglichen Gewichtes verlieren, ehe sie sterben. Im Winter halten sie ohne Nahrung länger aus als im Sommer. Eine Larve von Cosstis starb erst nach 135 Tagen. Nach Poulton verdanken die pflanzenfressenden Raupen Farbe und Zeich- nung theils den inneren Organen (Darm, Fettkörper, Herz, subcuticuläres Ge- webe), welche durch die Haut durchschimmern, theils echtem Pigmente in Hypo- dermis und Chitin. Ähnlich verhält es sich mit den Puppen, nur kommt hier noch Metallglanz hinzu. Das Chlorophyll und Xanthophyll der Nahrung gehen in gelöster Form in das Blut über, ersteres jedoch chemisch etwas verändert als »Metachlorophyll« und beide an einen Eiweißstoff des Blutes gebunden. Das Blut der Puppe von Ephyra punctaria enthält dagegen »Ephyrachlorophylk mit beson- deren Eigenschaften. Die chemische Beweisführung für diese Sätze stützt sich aber nur auf Analyse mit dem Mikrospektroskope entweder bei durchfallendem oder (z. B. bei grünen Eiern) auffallendem Lichte. Das Metachlorophyll im Blute oder sonstigen Geweben der Larve ist im Gegensatze zu echtem Chlorophyll 8. Hexapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 139 ungemein lichtbeständig, bedarf daher nicht fortwährender Erneuerung vom Darm her und geht durch die grünen Eier hindurch von einer Generation in die andere tiber, allerdings nicht ohne an Intensität einzubüßen. Auch das Xanthophyll wandert durch gelbe Eier hindurch von Generation zu Generation. Dies schließt nicht aus, daß, wenn die junge Larve grün, die ältere braun ist, beide Pflanzen- farben in dem kurzen Zeiträume vor einer Häutung gänzlich eliminirt werden, denn das Braun gehört der Haut der Larve an , deren Blut alsdann farblos oder schwach gelb ist. Sicherlich dienen alle FarbstofiTe aber nur der chromatischen Anpassung (»are only protective«) und haben keine andere Bedeutung für die Öconomie des Thieres. Ihr pliylogenetisches Auftreten ist daher auch nur so zu erklären, daß zunächst das Grün der Nahrung die Larven schützte , später auch das im Blute und den inneren Geweben, bis zuletzt die Aufspeicherung desselben in der Haut erfolgte. Alles Grün ist auf Chlorophyll, fast jedes Gelb auf Xantho- phyll zurückzuführen, selbst wenn diese Farben in der Haut abgelagert sind. — Verf. erörtert ferner sehr eingehend den Einfluß der Futterpflanzen auf die Färbung der Raupen, theilweise auf Grund neuer Beobachtungen und Versuche. Für Sm,erinthus ocellatus z.B. gelte, daß «leaves with white pubescent undersides, as a rule, produce whitish varieties, while those with green glabrous undersides generally produce yellowish forms«. Natürlich könne diese chromatische An- passung nicht eine directe Folge davon sein , daß die Raupen die Unterseite der Blätter verzehrt hätten , vielmehr dürften in allen solchen Fällen nervöse Reize eine Rolle spielen. — Aus den Notizen über den Chemismus des Blutes ist hervorzuheben , daß es in allen untersuchten Larven und Puppen mit Ausnahme vielleicht von Ephyra punckiria deutlich sauer reagirt. Mac Munn hat, wie schon 1873 Pocklington, Chlorophyllgrün, als solches durch Spectralanalyse erkannt , in den Flügeldecken der Canthariden gefunden, und betrachtet es als vom Thiere selbst gebildet. Bei grünen Larven [von Lepi- dopteren ?] rührt jedoch das Spectrum vom Chlorophyll der pflanzlichen Nah- rung im Darme her. Berge macht gegen Hagen [vergl. Bericht f. 1882 II p 126] darauf aufmerk- sam, daß die metallischen Farben der Haut, wenigstens bei den Coleopteren, nicht chemischer, sondern optischer Natur sind. Es liegt ihnen aber keineswegs einfache Interferenz des Lichtes zu Grunde , sondern eine Reihe complicirter und noch nicht genau ermittelter Thatsachen, Von Einfluß ist die Dicke der Chitin- schicht und ihre Structur, ebenso das Pigment in der Epidermis. Bei Behandlung der Haut mit kochender Salpetersäure bleibt die äußerste Chitinlage in Gestalt eines feinen Häutchens erhalten und zeigt (bei 3Iimela c/iinensis) auf schwarzem Grunde ein prachtvolles Metallgrün, auf weißem dagegen ein Gelb. Der Albi- nismus ist in manchen Fällen auf Anwesenheit von Luft an Stelle des Pigmentes zurückzuführen. Schoch will die Gestaltung der Freßwerkzeuge und die Metamorphose als maßgebendes Criterium für die Eintheiluug der Insecten deshalb nicht gelten lassen , weil es durch Anpassung erworbene Elemente seien , und setzt an ihre Stelle die Bildung des Thorax. Die Formen mit gesonderten Thoracalsegmenten (Schizothoraca) sind als niedere, die mit verschmolzenen dagegen als höhere In- secten anzusehen. Brauer gibt zunächst eine eingehende Auseinandersetzung über »System und Stammbaum«, in welcher er den Einfluß des Darwinismus auf die Systematik bespricht [vergl. Bericht f. 1885 I Allg. Biologie etc.]. Indem er sodann die von ihm entwickelten Ideen auf die Hexapoden anwendet , gelangt er zu 1 7 Gruppen derselben , welche in der Gegenwart durch keine Zwischenformen verbunden sind (s. unten). Eugereon Boeckingii A. D, ist durchaus keine solche transitorische j^Q Arthropoda. Type, sondern höchst wahrscheinlich eine Mantide , und dies gilt auch von man- chen Dichjoneura und von Lithomantis , wie denn überhaupt die Scudderschen synthetischen Formen bereits von Hagen richtig gedeutet worden sind [vergl. dagegen unten Scudder und Brongniart]. Somit sind die ältesten bekannten Hexapoden echte Orthopteren, Neuropteren, Amphibioten und ßhynchoten, die »mit Rücksicht auf allgemeinere Gattungscharactere in jetzt lebende Genera ge- hören« (p 2S1). Die Termiten sind schon, aus ihren Gewohnheiten zu schließen, in ihrer jetzigen Form von jungem Datum und zwischen ihnen und den Ephe- meren ist die Kluft ebenso groß wie zwischen den Aculeaten und den Tineiden. Jene sind «hochentwickelte Formen eines niedrigeren Formenkreises«, Diese niedrige eines höheren. Mit P. Mayer stellt Verf. die Thysanuren als »Aptery- gogenea« allen übrigen Hexapoden als den »Pterygogenea« gegenüber ; unge- flügelte Formen der Letzteren sind von geflügelten abzuleiten, während die Thysanuren ab origine ungeflügelt waren. Die Flügel sind monophyletischen Ursprunges (Verf. stimmt hier Adolph bei) , ebenso die Kiefer, dagegen entstan- den die saugenden Mundtheile polyphyletisch. Der Stammform sämmtlicher Hexapoden steht Camjmdea noch am nächsten, während für die Pterygogenea ein Urahn aufzustellen ist, der »im geschlechtsreifen Zustande geflügelt war und der somit zum Theil dem Protentomon Mayers entspricht« (p 293). Die Urform, von der sich einerseits durch Vermehrung der homonomen Segmente die Myrio- poden, andererseits die Apterygogenea abgezweigt haben, besaß noch keine Facettenaugen, sondern höchstens Punktaugen; die Abdominalgliedmaßen er- fuhren bei ihr eine Rückbildung. Ein ziemlich treues Abbild der früheren Ent- wickelung zeigt noch die Metamorphose von Chluc mit ihren 22 Stadien, von denen die ersten 8 mit verschiedenen Fälschungen das Archentomon wiederholen. Die Tracheenkiemen von C. sind darum auch den Flügeln homolog. Es scheint, als ob die Verschiedenheit der metabolen lusecten von ihren Larven in der Ent- wickelung secundärer Geschlechtscharactere ihren Grund hatte und dann sich allmählich durch Rückbildung der Jugendformen zu Raupen immer mehr ver- größerte. — Nach den Mundtheilen lassen sich die Hexapoden in 3 Gruppen son- dern : Meuorhyncha (Imagines mit denselben Saugröhren wie die Larven — Rhynchota), Menognatha (Imago und Nymphe mit Kaukiefern , Larven entweder auch oder mit Saugröhren — Coleoptera, Orthoptera, Odonata, Ephemeridae, Neuroptera, Panorpatae und Trichoptera, Hymenoptcra p. p.), Metagnatha (Larven mit beißenden, Imagines mit saugenden Mundtheilen — Aphaniptera, Hymenoptera p. p., Lepidoptera, Diptera). Die cyclorraphen Dipteren könnten eine eigene Gruppe (Metarhyncha) bilden , da der Saugapparat der Made bei der Imago nur modificirt ist. Verf. bespricht ferner sehr eingehend das Verhältnis der Thoraxsegmente zu einander und zum Abdomen und gruppirt nach diesem Principe die Familien der Hexapoden. Entweder bleibt der 1. Ilinterleibsring selbständig mit voHkommeuer Bauch- und Rückenplatte, oder er geht unter Rück- bildung der Bauchplatte eine Verbindung mit dem Thorax ein, oder endlich der Metathorax schließt sich dem Abdomen inniger an und erscheint als 1 . Segment desselben. Die richtige Deutung der betreffenden Theile resultirt aus der Lage von Meso- und Metaphragma , welche beide nichts als die Chitinsehnen für die indirecten Längsmuskeln der Flügel sind. — In den »genealogischen Betrachtun- gen« (p 315 ff.) äußert sich Verf. über das Nervensystem (man muß secundär concentrirte und nicht ^5oncentrirte Ganglienketten unterscheiden) und über die Bedeutung der Metabolie für die Phylogenie. Die Verwandlung ist, als durch Ab- kürzung und Vereinigung mehrfacher Häutungsstadien entstanden , zum größten Theile eine nachträglich erworbene ; da sie nun mit der Verpuppung ihr Ende er- reicht, so wird die Larvenform nur für die Erforschung der nächsten Verwandtschaft 8. Hexapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 141 (Familie und Gattung) des Thieres von Wichtigkeit sein, während die Nymphe in vielen Fällen eine Phase aus der Phylogenese abspiegelt. Die Packardschen »Superorders« [vergl. Bericht f. 1883 II p 108] sind »sehr unnatürlich«, wie Verf. im Einzelnen darthut ; überhaupt »zwängt man in die Ordnungen das He- terogenste zusammen , als Gattungen unterscheidet man durch kleinliche Merk- male das Ähnlichste, oft nur nach wechselnden secundären Geschlechtsorganen« (p 321), ein Verfahren, gegen das Verf. sich an vielen Stellen seiner Schrift scharf ausspricht. Er selbst stellt folgende Ordnungen auf: I. Apterygogenea (Collembola, Thysanura) . IL Pterygogenea. 1. Dermaptera, 2, Ephemeridae, 3. Odonata, 4. Plecoptera (Perlariae), 5. Orthoptera genuina (Blattidae, Manti- dae, Phasmidae, Saltatoria; Embidae?), 6. Corrodentia (Mallophaga, Termitidae, Psocidae), 7. Thysanoptera, 8. Rhynchota (incl. Parasita), 9. Neuroptera (Mega- loptera, Sialidae), 10. Panorpatae, 1 1 . Trichoptera, 12. Lepidoptera, 13. Di- ptera, 14. Siphonaptera, 15. Coleoptera (incl. Strepsiptera) , 16. Hymenoptera, und characterisirt sie alle sehr ausführlich. Ordnung 12 und 13 lassen sich auf eine gemeinschaftliche Form, welche die Mumienpuppe annahm, zurückführen ; wahrscheinlich stammen 15, 14 (?), 9, 10 und 11 von einer den Corrodentien nahestehenden, und 16 von einer den Orthopteren näheren Form ab. Wahre Nachkommen des Urinsectes scheinen nur die Ephemeriden zu sein. Verf. zer- legt endlich nach der Art der Verwandlung und der Anzahl der Malpighischen Gefäße die Pterygogenea in 6 Stämme: Menognatha polynephria (1-5), M. oligonephria (6), Thysanoptera, Menorhyncha (8), Metabola oligonephria (12-15) und M. polynephria (16), will aber als »Superorders« aufgefasst wissen: Ortho- ptera s. lat. (1-6), Thysanoptera, Menorhyncha (8), Petanoptera (9-14), Cole- optera, Hymenoptera. — Phylogenese etc. der Hexapoden, vergl. oben Kings- ley (2) p 5. Scudder fand in den tertiären Schichten von Florissant etwa 40 Exemplare eines 1 cm langen, wahrscheinlich aquatilen Arthropoden, welcher aus 3 Tho- racalsegmenten mit je 1 Schwimmbeinpaare und einem nur undeutlich in 4 Seg- mente gegliederten Abdomen mit Klauen am Ende besteht und an Stelle des Kopfes lediglich einen lang ausdehnbaren weichhäutigen Rüssel mit eigenthüm- lichen Mundtheilen (a ring of buccal plates terminating anteriorly the alimentary canal) getragen zu haben scheint. Dieser Planocephalus aselloidcs bildet am besten eine besondere Gruppe der Thysanuren, Ballostoma, und ist von einer Form ab- zuleiten, welche einen Kopf besaß. Brongniart gibt eine vorläufige Übersicht der Hauptfunde in der Steinkohle von Commentry nach den bis jetzt vorliegenden 1300 Stücken. Für Verf. ist das Vorkommen von Coleopteren in der Primärzeit fraglich ; was sich sonst findet, sind Apteren, Hemipteren, Neuropteren und Orthopteren. In dem Streite zwi- schen Scudder und Hagen über die Deutung der Devoninsecten »entfernt sich H. weit mehr von der Wahrheit als S.« , obwohl des Letzteren Bestimmungen auch gewagt genug sind. Scudder liefert in ZIttel (Titels, oben p 67) eine ausführliche Darstellung der fossilen Hexapoden (p 74 7-831). »Die beflügelten Urinsecten lebten wenig- stens im Imagozustande sicherlich auf dem Lande«. Sämmtliche paläozoische Formen gehören der Gruppe der Palaeodictyoptera an ; diese sind »Collectiv- typen« mit 4 gleichartigen, häutigen Flügeln, mit unvollständiger Metamorphose. Sie erschienen vermuthlich gleichzeitig mit den ersten Landpflanzen und zer- fallen in die Orthopteroidea [Bictyoneura, Broyeria, Mylacris etc.), Neuropteroi- dea [Platephemera, Lithomantis etc.), Hemipteroidea [Euyereon etc.) und Cole- opteroidea und leiten durch unbekannte triassische Formen zu den heutigen über, wie Verf. im Einzelnen darlegt (z. B. Protophasmiden zu Phasmiden und Salta- ^42 Arthropoda. torien, i^w^^o/-ma zu Homopteren, P/iihanocoris zw HetevoT^teren) . Die Trennung der Homoptera von den Heteroptera und der Ortboptera von den Neuroptera s. lat. fand wahrsclieinlich früher statt als die Spaltung der Letzteren in Pseudo- neuroptera und Neuroptera s. str. Auch hat es wohl »bereits in der Steinkohlen- formation Ahnen der Coleopteren gegeben, die zeitlebens in Holz eingebohrt existirten und dadurch vielleicht auch der Einbettung in Erdschichten entgingen« . Durch diese Lebensweise wurden sie wohl »zur Erhärtung ihrer Vorderfliigel und dadurch zur Anbahnung größerer Veränderungen ihrer Organisation ver- anlaßt«. Die Metabola (Diptera, Lepidoptera, Hymenoptera) haben wohl mit den Neuroptera s. lat. gemeinsamen Ursprung. b) Einzelne Ordnungen. Aptera. Genitalien der Aptera, vgl. Schneider (^), s. oben p 135; Phylogenese, vgl. Brauer, s. oben p 139, und Brongniart, s. oben p 141. Sommer liefert eine eingehende Darstellung des Baues von Macrotmia pliimbea. Methode: Abtödtung der Thiere in kochendem Wasser, Härtung in verdünnter (1:5) Pikrinschwefelsäure, Färbung mit Hämatoxylin und Karmin, Einbettung in Paraffin etc. ; außerdem Untersuchung lebender Thiere. Integument. Unter- halb der Matrix der deutlich geschichteten [gegen Tullberg] Cuticula liegt eine binde- gewebige structurlose Basalmembran. Die Schuppen stehen in keinem unmittelbaren Zusammenhange mit der Matrix, da ihre Stiele die Cuticula »nur zum Theil durchboh- ren«. Die Matrix entbehrt der Zellgrenzen; besonders große birnförmige Zellen dienen wohl zur Bildung der Borsten. Mit der Matrix in räumlichem und wahrscheinlich auch genetischem Zusammenhange und von der Leibeshöhle durch die Basalmem- bran getrennt liegt besonders an der ventralen Fläche des Abdomens die »reticu- läre Schicht(f, ein Netzwerk von Plasma mit Kernen in den Knoten der Maschen, mit gelben Fetttröpfchen und Concretionen. Dieses Gewebe setzt sich in einen jederseits neben dem Darme gelegenen wulstförmigen Körper (Urincanal, Tullberg) fort, der als E x c r e t i o n s o r g a u zu betrachten ist ; in ihm sind die Concretionen (in der Hauptmasse Calciumcarbonat mit organischer Masse ; ob auch Harnsäure ?) äußerst zahlreich, namentlich bei alten Thieren. Wahrscheinlich ist es ein Syn- cytium, das dem Fettkörper der übrigen Insecten entspricht, obwohl es ectoder- malen Ursprunges zu sein scheint. Die Insertion der Muskeln am Integument geschieht mittels Chitinsehnen ; das Perimysium ist besonders mächtig an den Kopfmuskeln entwickelt; am Darme finden sich verästelte Muskelzellen. Der Ventraltubus enthält große, schon von Tullberg gesehene einzellige Drüsen, deren Secret durch chitinige Ausftihrgänge auf die Oberfläche der aus dem Tubus ausstülpbaren Haftlappen gelangt und vielleicht mit Hülfe der Tarsen das Integu- ment des Thieres einfettet. Der Darme anal durchsetzt als Cylinder den Körper in fast gerader Richtung. Am Vorderdarme läßt sich der Schlund mit starker Ringmusculatur und die Speiseröhre unterscheiden ; letztere mündet im Metatho- rax auf einer drüsigen Papille in den Mitteldarm ein. Vom Integumente gehen an den Schlund eine Anzahl Dilatatores. In der Hypodermis des Vorderdarmes, welche eine dicke Chitinschicht absondert, waren keine Zellgrenzen aufzufinden ; die Kerne der Ringmuskelzellen liegen alle dorsal fast in gerader Linie hinter ein- ander. Eine Tunica serosa ließ sich nicht nachweisen. Drüsige Anliänge (mit Ausnahme der Papille) fehlen ; die vermeintlichen Speicheldrüsen (Olfers und Lubbock) sind Streifen reticulären Gewebes, die mit dem hinteren Abschnitte des Ösophagus fest verwachsen sind , was bei der epithelialen Natur des Letzteren 8. Hexapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 143 nicht befremden kann. Der Mitteldarm, die verdauende Cavität, besteht aus einer bindegewebigen Serosa, einer doppelten Muskellage, einer Tunica propria und dem Epithel, dessen Zellen einen Saum feiner Härchen tragen. Der Enddarm ist durch einen vorspringenden Chitinring, dessen Zähnchen einen Reusenapparat darstellen, vom Mitteldarm geschieden ; im Bau gleicht er dem Vorderdarme ; Rectalpapillen fehlen; die äußerst kräftige Musculatur vermag infolge ihrer Anordnung »eine Bewegung des Blutes an der Darmfläche entlang« herbeizuführen. Das Rücken- gefäß reicht vom 8. Abdominalsegment bis zum Thorax und hat 5 Paare Ostien; diese sind »Einfaltungen der Herzwand gegen das Lumen des Herzrohres und dessen Achse« und tragen nur kleine Öffnungen zum Durchtritte des Blutes in das Herz. Die Wandung des Letzteren besteht aus einer Intima, einer starken Ring- muskelschicht und einem spinnwebeartigen Gewebe mit Kernen. Die vom Integu- mente ausgehenden 5 Paar Flügelmuskeln strahlen auf das Herz mit feinen Fib- rillen aus, die theils quer, theils längs gerichtet sind, und dienen nicht nur zur Befestigung des Herzens, sondern können auch seine Form verändern. Nerven- system. Im Abdomen ist nur Ein Ganglion vorhanden; Eingeweidenerven konnte Verf. nicht auffinden. An den Beinen, Palpen, der Ober- und Unterlippe stehen säbelförmige Sinnesborsten. Geschlechtsapparat. Die langgestreck- ten Ovarien sind vorn mit je 1 Muskelfaden an der ventralen Körperdecke befestigt und bestehen jedes aus einem medialen cylindrischen («Eierstrang«) und lateralen mehrzipfeligen (»Keimlappen«) Rohre. Die Wandung wird von einer Tunica pro- pria mit Kernen gebildet ; ein Epithel ist zu keiner Zeit und in keiner Abtheilung des Eierstockes vorhanden. Auch die Endfäden, welche als Keimlager zu dienen hätten, fehlen; dagegen ist dieses im Keimlappen vorhanden, und die Eier schie- ben sich von hier aus, zu Strängen vereinigt, in den Hohlraum des Ovariums hin- ein, wo alsdann die Stränge zerfallen und sich aufknäueln. Ein Unterschied zwischen Eiern und Nährzellen scheint dabei nicht zu bestehen , dennoch aber wird aus jedem Knäuel, indem seine Zellen sich vereinigen und Dotter bilden, nur ein einziges Ei, ähnlich wie es Ganin für die Cecidomyiden angibt. Vielleicht ist jeder vom Keimlager ausgehende Zellstrang einer Eiröhre der übrigen Insecten gleichwerthig, und jeder Knäuel einer Eikammer. Die Vagina ist mit einer chiti- nigeu Intima versehen, ihre Ausstülpung, die Samentasche, zeichnet sich durch Chitinleistchen aus ; die Oviducte besitzen Cylinderepithel, Tunica propria und Längsmuskeln. Vom Integumente treten zur Vagina Muskeln, die wohl als Offner wirken. — Die Hoden haben gleich den Ovarien 2 Abschnitte und zeigen auch die gleiche Befestigung an der Körperwand ; sie und die Vasa deferentia bestehen aus einer structurlosen Membran und einem in das Lumen ragenden Cylinderepithel. Der Ductus ejaculatorius hat in seiner Wandung Drüsen ('?Jzellen und ist mit Chitin ausgekleidet; ein eigentlicher Penis fehlt. Die fadenförmigen, kopflosen Sperma- tozoiden scheinen aus abgeschnürten Epithelzellen des Hodens zu entstehen, in- dem diese sich theilen, und die so entstandenen kleinen Zellen sich allmählich in die Länge strecken . Entwicklung. In den Eiern konnte nie ein Keimbläschen nachgewiesen werden; abgelegt werden sie entweder einzeln oder in Häufchen. 3 — 4 Tage später sprengt der Embryo, mit einem höckerigen Apoderma bekleidet, mit Hülfe von 4 demselben jaufsitzenden Chitinhaken die chitinähnliche Eischale; später schlüpft er aus dem Apoderma aus imd wächst unter wiederholten Häutun- gen heran. Auch die geschlechtsreifen Thiere häuten sich noch, im Sommer alle 2 — 3 Wochen einmal. Hierbei werden die Schuppen in continuo mit der alten Cuticula abgelegt und stehen mit den neuen in gar keinem Zusammenhange, wie es doch die anderen Haargebilde thun. Vorder- und Mitteldarm, Ductus ejac. und Vagina nebst Rec. seminis häuten sich natürlich auch; zugleich aber findet eine Erneuerung des Epithels im Mitteldarme statt, während das alte Epithel -[44 Arthropoda. von einer Cuticula umhüllt in Form einer Wurst aus dem Darme ausgestoßen wird, nachdem zuvor wohl noch die verdaulichen Stoffe in ihm dem Thiere zur Nahrung gedient haben. Der Mitteldarm erneuert sich jedoch nicht, wenn er mit Gregarinen inficirt ist, die häufig neben Nematoden und Cysticerken in großer Anzahl darin vorkommen. Gebilde ähnlich Pseudonavicelleu finden sich mitunter im ganzen Körper dicht angehäuft. Pseudoueuroptera. Auge von Agrion und Aeschna, vergl. oben p 3 Hicksotl {^)] Flügel von Aeschna, vergl. Amans, s. oben p 133 ; Muskeln von Aeschna, vergl, oben p 2 Leydig; Stigmen von Pseudoneuropteren, vergl. Bos, s. unten p 149 ; Genitalien, vergl. Schneider (^), s. oben p 135; Phylogenese, vergl. Brauer, s. oben p 139, und Zittel, s. oben p 141. Creutzburg citirt in seiner Mittheilung über die Circulatiou in den Schwanz- borsten der Ephemerenlarven die Arbeit von Zimmermann [vergl. Bericht f. 1880 II p 110] nicht, welche bereits dieselben Resultate darbietet. Roster verbreitet sich eingehend über die Anordnung der Tracheen in der Larve von Aeschna cyanea Müll. Viallanes (-) beschreibt im Anschluß an die Arbeit von E. Berger (1878) sehr ein- gehend das Ganglion opticum, d. h. den nervösen Tractus zwischen Auge und Opticus von Aeschna. Methode: Härtung 15 — 20 Minuten lang in 2 Theilen Os- miumsäure 20/o i^ind 1 Theil Alcohol 70%; Färbung in toto; Einschluß in Pa- raffin. Der Opticus besteht aus 2 völlig getrennten Bündeln, welche von verschie- denen Punkten des Hirns ausgehen und an 2 Orten der »inneren Markmasse« enden. Diese selbst ist aus 3 »Kapseln« von Punktsubstanz zusammengesetzt und steht mit der »äußeren Markmasse« sowohl durch 2 Stränge ohne Faserkreuzung als auch durch ein Bündel , welches totale Faserkreuzung aufweist (»inneres Chiasma«) in Verbindung. Die äußere Markmasse, an die sich 4 Ganglienhaufen anschließen, gibt nach außen Fasern ab, welche nach completer Kreuzung (»äußeres Chiasma«) in die »Ganglienlamelle« übergehen. Diese ist bei der jungen Larve noch ziemlich weit von der Retina entfernt, nähert sich ihr aber im Laufe der Entwicklung fast bis zur Berührung ; hieraus resultirt einerseits eine Ver- längerung der Fasern des äußeren Chiasmas , andererseits eine Verkürzung der »postretinären« Fasern, welche von der Ganglienlamelle durch die Membrana limi- tans des Auges in die Retina hineintreten. Die Ganglienlamelle läßt deutlich eine Mittellage aus Punktsubstanz , sowie eine äußere und eine innere zellige Schicht unterscheiden und ist vorn wie hinten mit einer Membrana limitans bekleidet; bei jungen Larven ist sie jedoch theilw eise nochunausgebildet. Carriere (Titel s. oben p 1) gibt hierzu einige kritische Bemerkungen. In dem allgemeinen Theile seiner Monographie der Embidinen (p 208 — 229) macht Hagen darauf aufmerksam, daß nach Lucas' Untersuchung (1859) zu ur- theilen die Ovarien denen von Termes sehr ähnlich sind, und tritt aus diesem und andern Gründen für die Verwandtschaft beider Gruppen ein. Die Orthoptera (incl. Pseudoueuroptera) bestehen aus einer Anzahl Familien , die unter sich nicht durch lebende Formen verbunden sind. — Die Vorderbeine der Embiden dienen vielleicht zum Graben und beim Spinnen der Röhren , die Hinterbeine vielleicht zum Springen. Von den 17 bekannten Species sind 3 gänzlich flügellos und fehlen auch bei den übrigen die Flügel entweder den (J' oder den Q. . Das Abdomen hat 9 Segmente und auf der Bauchseite eine durchsichtige Haut , sodaß der Bauch- strang durchschimmert. 8. Hexapofla. I. Anatomie, Ontogenie etc. 145 Neuroptera. Fühler der Trichopteren, vergl. F. Müller, s. oben p 131 ; Flügel von Panorpa, vergi. Amans, s. oben p 133; Genitalien der Neuropteren, vergl. Schneider (^), s. oben p 135; Phylogenese, vergl. Brauer, s. oben p 139, Brongniart, s. oben p 141, und Zittel, s. oben p 141. Nach H. Dewitz {*) haben die Chrysopa-LoxvQVi den Rücken mit Angelhaaren besetzt, welche die auf sie angedrückten Gegenstände festhalten. Strepsiptera. Phylogenese der Strepsiptera, vergl. Brauer, s. oben p 139. Orthop tera. Palpen von Orthopteren, vergl. Plateau (^), s, oben p 131 ; Vorderbeine von Gryllotalpa, vergl. Arnold, s. oben p 138 ; Flügel von Orthopteren, vergl. Amans, s. oben p 133; Auge von Periplaneta , vergl. oben p 3 Hickson (^) ; Stigmen von Orthopteren, vergl. BOS, s. unten p 149 ; Muskeln von Forßcvla, vergl. oben p 2 Leydig; Haftdrüsen der Orthopteren, vergl. Dahl , s. oben p 132; Spei- cheldrüsen von Periplaneta, vergl. Krause, s. oben p 131 ; Prothoracaldrüse von Mantis , vergl. oben p 68 Bertkau (^) ; Darm von Grylhtalpa, vergl. Frenzel, s. oben p 133; Genitalien der Orthopteren, vergl. Schneider (^), s. oben p 135; Hungertod, vergl. Passerini, s. oben p 138 ; Phylogenese, vergl. Zlttel, s. oben P 141, Brongniart, s. oben p 141, und Brauer, s. oben p 139. *Griffiths findet im Magen von Periplaneta Salzsäure und eine dem Pepsin ver- wandte Substanz. Die Angaben über Speichel und das Excret der Malpighischen Gefäße bieten nichts Neues. Nach J. Dewitz durchlaufen die Spermatozoon von Periplaneta orientalis keine geradlinige Bahn, sondern drehen sich im Sinne eines Ulirzeigers im Kreise, wer- den überdies von Flächen angezogen. Dies habe zur Folge, daß im Ovarium die Samenfäden die Eioberfläche nicht verlassen können und bei ihrer Umkreisung derselben nothwendig in eine der Mikropylen gelangen. Korotneff studirte die Entwicklung von Gryllotalpa. Das Ei besitzt Choriou und Dotterhaut. Wie schon Weismann angegeben [vergl. Bericht f. 1882 H p 1 3 1] steigen aus dem Innern des Eies Zellen an die Oberfläche, um das B l ast o- derm zu bilden ; daß sie vom Keimbläschen abstammen, hat Verf. nicht beobach- tet. Es sind nur 4 oder 5 ; auf der ventralen Oberfläche angekommen, wachsen sie enorm und theilen sich, worauf die Tochterzellen mit Hülfe von Pseudopodien von den Mutterzelleu fortkriechen. Anfänglich sind sie kernlos und vermehren sich ebenfalls durch Theiluug so lange, bis das Blastoderm das ganze Ei über- kleidet . Das E u 1 0 d e r m entsteht in der Art, daß beliebige Blastodermzellen sich stark vergrößern, in den Dotter hineinsinken und vom Ectoderm bedeckt werden; auf einem Querschnitte sind selten mehr als 4-5 vorhanden, aber ziemlich regel- mäßig angeordnet. Das Mesenchym, aus dem nur Bindegewebe hervorgeht, zeigt sich zuerst an den beiden Seiten der Keimscheibe als große Zellen im Blasto- derm, die ebenfalls von der Oberfläche verschwinden und unter das Ectoderm zu liegen kommen. Auch das eigentliche Mesoderm (»Myoblast«) entsteht zu bei- den Seiten der Mediane, indem Ectodermzellen sich theilen ; es wird bald mehr- schichtig, während das Ectoderm in der Mediane sich zur Primitivrinne vertieft, die aber bald einer Verdickung (Anlage des Nervensystems) Platz macht. In viel späterer Zeit zeigt sich in der Nähe jedes Stigmas ein Zellhaufen, wie ihn Ticho- Zool. JahresbericUt. 1885. II. 10 146 Arthropoda. mirof als Drüsenkörper beschreibt [vergl. Bericlit f. 1882 II p 143] ; es ist aber wohl nur Mesenchym. Die Embryonal häute entstehen in der bekannten Weise als Falten; Dotter dringt nie zwischen sie ein. Wenn sie mit einander verwachsen sind, so beginnt eine starke Vermehrung der Entodermzellen, und diese ordnen sich unter der Serosa zu dem »Rückenorgan«, d. h. zu einer Zellschicht, welche den Dotter auf dem Rücken und den Seiten bekleidet. Die Serosa löst sich nun ab, zerreißt, schrumpft zusammen und unterliegt zuletzt der fettigen Degeneration. Zugleich contrahirt sich der Embryo, der schon ^6 ^©s Eies eingenommen hatte, bis auf ^5 desselben und nun reißt das Amnion auf der Bauchseite ein, worauf der Embryo allmählich aus ihm herausschlüpft. Auch das Rückenorgan wird langsam resorbirt und bildet bald nur noch einen Knopf aus Cylinderzellen. Letztere ver- mehren sich alsdann stark und strömen in den Dotter hinein (wobei sie mitunter Kerne von Entodermzellen mit sich reißen), wahrscheinlich um ihn mechanisch oder chemisch umzuwandeln ; schließlich findet man sie im Mitteldarme, wo sie aufgezehrt werden. Das Rückenorgan selbst geräth gleichfalls in den Dotter hin- ein und degenerirt dort fettig. — Der Myoblast zerfällt bald nach seiner Ent- stehung durch eine Cölomspalte in eine oberflächliche und eine tiefe Schicht ; darauf segmentirt er sich in 1 8 Somite (4 gehören dem Kopfe, 3 dem Thorax, 1 1 dem Abdomen an) und dann schließt sich die Spalte an der Grenze zweier Somite wiederum bis auf einen lateralen Rest ; die Leibeshöhle in den Gliedmaßen steht mit der in den Somiten in Verbindung. Die knopfförmigen Anhänge am 1. Abdominalsegmente sind übrigens den Extremitäten nicht homolog; später gehen sie spurlos zu Grunde. Aus dem medialen Theile des Myoblastes entstehen die Muskeln der Gliedmaßen, die Längsmuskeln neben dem Bauchstrange und das Bauchdiaphragma ; aus dem lateralen Theile geht das Herz hervor. An der Stelle nämlich, wo das Hautfaserblatt sich zum Darmfaserblatte umbiegt, also ganz lateral, ti'ennen sich in jedem Somite vom Myoblaste einige Zellen ab, ragen zunächst frei in den Dotter hinein, ordnen sich dann zu einer ununterbrochenen Reihe an und wachsen nun zwischen Ectoderm und Mesoderm hinein. Zugleich lösen sich vom medialen Ende des Myoblastes Zellen ab , werden zu Blutkörper- chen und wandern zwischen Mesoderm und Dotter zu der Anlage des Herzens, d. h. jener Zellreihe hin. Diese selbst dehnt sich immer mehr nach dem Rücken zu aus und bildet eine »Gefäßrinne«, deren innere, unmittelbar dem Dotter auf- liegende Wandung später die Muskelwand des Darmes liefert, während die äußere zum Rückendiaphragma und zu Muskeln wird. [Ref. hat die Darstellung dieser Verhältnisse nicht völlig verstanden.] Wenn schließlich die beiden Gefäßrinnen in der dorsalen Mediane zusammentreffen, fehlt dem so gebildeten Herzen noch die Innenwand, da es dem Darm direct aufliegt [vergl. im Übrigen Bericht f. 1883 II p 108.] Das Nervensystem entsteht in der Richtung von vorn nach hinten ; die erste Anlage ist eine Verdickung des Ectoderms durch Bildung von 2 Zell- schichten, dann folgt eine mediane Furche. Jede vom Ectoderm aus nach innen rückende Neuroectodermzelle liefert eine Gruppe Ganglienzellen. Der Hat- schek'sche Mittelstrang geht zwischen den Commissuren zu Grunde und scheint nur im Bereiche der Ganglien sich an der Bildung der nervösen Elemente zu be- theiligen. Er ist von Nusbaum [vergl. Bericht f. 1884 II p 17 7] fälschlich als me- sodermale Chorda beschrieben worden und soll nach ihm das Neurilemm liefern ; in Wirklichkeit aber geht Dieses aus wandernden Blutkörperchen hervor, die sich zwischen die Nervenzellen schieben. (Dies ist in noch höherem Grade bei den Larven der Fall , wo Blutkörperchen die »absterbenden Nervenelemente zu er- setzen« scheinen und wo das innere Neurilemm aus sehr vielen amöboiden Zellen besteht.) Das letzte Abdominalsegment entbehrt eines Ganglions; durch Ver- schmelzung reducirt sich die Zahl der Nervenknoten von I 7 auf 1 3. Die Anlage 8. Hexapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 147 des Gehirns differenzirt sich im Laufe der Entwicklung zum Ganglion opticum und zum Obersclilundganglion. Anfänglich liegt sie ganz ventral; erst wenn der Ösophagus, der zuerst ein nach außen ragender Kegel ist, in den Dotter hinein- wächst, rückt sie auf die dorsale Seite. — Vorder- und Hinterdarm treten mit dem Mitteldarm erst nach dem Ausschlüpfen des Embryos in Verbindung. Die Musculatur des Mesenterons entsteht aus 2 latero-ventralen »Zellpolstern«, zu denen die ersten Tracheen treten. (Die von Hatschek für Bomhyx angegebene entodermatische Drüse ist vielleicht eine Trachee.) Die Polster verwachsen zu- nächst ventral, schieben sich dann unter die Gefäßriuneu und sind hier als leichte Hervorragungen selbst dann noch zu erkennen, wenn die Muscularis bereits dorsal geschlossen ist. Das Epithel des Mitteldarmes bildet sich auf complicirte Weise. Die Entodermzellen nämlich zerlegen den Dotter in Pyramiden, die aber im Cen- trum zusammenhangen ; darauf verwandeln sich die Pyramiden, während sie sich scharf von der centralen Masse absetzen, in «epithelähnliche Dotterschollen« und persistiren als solche längere Zeit. Inzwischen ist an der Mündungsstelle des Öso- phagus aus Mesodermelementen eine dorsale und eine ventrale »blattartige Bildung« entstanden, an deren Grunde amöboide (Blut- ?) Zellen liegen. Letztere wandern in den Dotter ein. Außerdem hat sich eine Aussackung des Ösophagus, der Kropf, gebildet und pumpt, sowie der Embryo ausgeschlüpft und die Scheidewand zwischen Jenem und dem Mitteldarme geschwunden ist, den gesammten Inhalt des Letzteren, also Dotter und Wanderzellen, in sich hinein. Die Wanderzellen, die wahrschein- lich nur die Assimilirung des Dotters vorbereiten, gehen später zu Grunde, ebenso die blattförmigen Bildungen. Auch die epithelähnlichen Dotterschollen des ent- leerten Mitteldarmes degeneriren völlig , und an ihre Stelle treten Blutzellen ; mithin ist das Epithel des Mesenterons der Larve ein mesodermales, und darf man den ganzen Vorgang als eine Histolyse betrachten. Später gelangt der Dotter in den Mitteldarm zurück, indeß der Kropf sich mit Luft füllt, »was gewiß zu der Athmung in nächster Beziehung steht« und »auf die Möglichkeit einer höchst in- teressanten Vergleichung des Kropfes mit der Lunge der Wirbelthiere hinweist, eine Vergleichung, die der Lage des Kropfes wegen sehr plausibel erscheint.« Hailez nennt organische Axe des Eies diejenige, welche der Längsaxe des Eier- stockes parallel geht; im Übrigen vergl. Kadyi in: Z. Anzeiger 2. Jahrg. 1879 p 632 ff. sowie Rathke in: Meckel's Archiv 1832 p 373. Thysanoptera. Genitalien und »Zellkörper« der Thysanopteren, vergl. Schneider (^), s. oben p 135; Phylogenese, vergl. Brauer, s. oben p 139. Coleoptera. Palpen von Coleopteren, vergl. Plateau (2), s. oben p 131; Flügel, vergl. Amans, s. oben p 133 ; Hautdrüsen, Muskeln, Nerven, Drüsennerven, vergl. oben p 2 Leydig; Gehör, vergl. F. Will ('-), s. oben p 130; Haftapparate und Haut- drüsen, vergl. Dahlj s. oben p 132; Saugnäpfe \on Dytiscus, vergl. H. Dewitz (^j, s. oben p 132 ; Stigmen von Coleopteren, vergl. Bos, s. unten p 149 ; Mitteldarm, vergl. Frenzel, s. oben p 133; Chlorophyll bei Canthariden, vergl. Mac Muntl, s. oben p 139; Hautfarben der Coleopteren, vergl. Berge, s. oben p 139; Geni- talien, vergl. Schneider ('), s. oben p 135; Eiröhren von Carahis, vergl. Cho- lodkovsky (i), s. unten p 163; Eibildung bei Coleopteren, vergl. Korschelt, s. oben p 135; Leuchten von Lampyris, vergl. Arnold , s. oben p 138; Hungertod der 10* j^48 Arthropoda. Coleopteren, vergl. Passerini, s. oben p 138; Phylogenese, vergl. Zittel, s. oben p 141, Brongniart, s. oben p 141, und Brauer, s. oben p 139. F. Will {^] beschreibt den Stridulationsapparat an Flügeldecken und Abdomen beider Geschlechter von Cryptorrhjnchis als den ersten bei Rüsselkäfern bekannt gewordenen, was Landois zn einer Berichtigung veranlaßt. Emery constatirte durch erneute Beobachtung von Luciola unter dem Mikro- skope, daß das Leuchten seinen Sitz in den Parenchymzellen (und zwar vielleicht ausschließlich in denen der durchsichtigen oberflächlichen Schicht) des Organs hat ; mithin muß die Reduction der Osmiumsäure in den Tracheen auf eine andere Substanz als die Leuchtmaterie zurückgeführt werden. Hanson findet bei der Larve von Cetoma und Sinodendron die Gitterstigmen offen (gegen Meinert; vergl. Bericht f. 1883 II p 105). Der Rest der Arbeit ist polemischer Natur. Beauregard fand die noch fehlenden Jugendstadien von Ccmfharis auch frei- lebend vor [vergl. Bericht f. 1884 II p 1G6]. Die 1. Larve lebt vom Honig ver- schiedener Colleü'sSiXiQU und vielleicht auch anderer Hymenopteren ; die 2. (Pseu- dochrysalis) durchbohrt die Zellen und gräbt sich in den Sand ein ; die 3 . wird nach einigen Tagen starr; aus ihr geht die 4. (Nymphe) hervor und aus dieser die Imago. Das Cantharidiu bildet sich in den Genitalorganen und ist schon vor der Begattung vorhanden. Hymenopter a. Anatomie vow Apis, vergl. *Leuckart; Flügel von Hymenopteren, vergl. Amans, s. oben p 133 ; Stachel von Apis, vergl. Carlet; Auge von Vespa und Apis, vergl. oben p 3 Hickson ('^) ; Geschmacksorgane der Hymenopteren, vergl. F. Will (2), s. oben p 130; Haftdrüsen, vergl. Dahl, s. oben p 132; Speicheldrüsen von Bomhus, vergl. Krause, s. oben p 131 ; Muskeln von Bombtis, vergl. oben p 2 Leydig; Mitteldarm der Hymenopteren , vergl. Frenzel, s. oben p 133; Fett- körper von Formiciden, vergl. Witlaczil (i) , s. imten p 152; Genitalien der Hymenopteren, vergl. Schneider ('), s. oben p 135; Eiröhren von Bomhus, vergl. Cholodkovsky ('), s. unten p 1G3; Eibildung der Hymenopteren, vergl. Korschelt, s. oben p 135 ; Hungertod, vergl. Passerini, s. oben p 138 ; Phylogenese, vergl. Zittel, s. oben p 141, und Brauer, s. oben p 139. Briant beschreibt kurz Musciilatur und Behaarung der Antennen von Apis, ohne anscheinend Neues zu bieten. Forel (p 325-335) schließt sich betreffs der Sinnesorgane an den Antennen der Hymenopteren, speciell der Ameisen, im Allgemeinen der Kräpelin'scheu Dar- stellung [vergl. Bericht f. 1883 II p 6] an. Er unterscheidet wie früher 3 Arten »äußerera Sinnesorgane, nämlich spitze Tasthaare, Sinneskolben und Sinueshaare, die in einer Grube liegen und häufig zu Platten umgewandelt sind. Die 2 Arten »innerere Organe — Pfropf- und Flaschenorgane — sind entweder Beides Drüsen oder Beides nervöser Natur (gegen Kräpelin), im letzteren Falle aber gewiß keine Geschmacks- oder Geruchswerkzeuge; bei Apis, Bombus und Mer/achile sind sehr viele vorhanden (aber nur auf der medial-dorsalen Fläche) , dagegen fehlen sie gänzlich bei Vcspa, obwohl diese doch gut riechen kann. — Die Papillen am Ende des Unterkiefers bei Formica ri(ßbarbis werden von einem Nerv versorgt uud die- nen wohl dem Geschmacke. Nach V. Dalla Torre ("^) haben die Arbeiter von Bombus Gerstäckeri Mor. viel kürzere Rüssel als die Q. und sind auch auf andere Nährpflanzen angewiesen (»Heterotrophie«) . Chatin [^] entdeckt »l'^troite similitude« der Maxille bei den kauenden Insecten 8. Hexapoda. I. Anatomie, Ontogenie etc. 149 und den Hymenopteren und (2) «l'intime parente morphologique« der Mandibel bei- der Insectenordnungen. Bos bespricht sehr eingehend den äußeren Bau aller 3 Formen von Formica rufa, ferner das Hautskelet nebst dem Entothorax, wobei er besonderes Gewicht auf die Darstellung der Gelenkverbindungen legt, und endlich den Anfang des Darmcanales. Auch er hält die Myrmiciden für älter als die Formiciden. Der Auswuchs auf dem Hinterleibsstiele der Letzteren hat dämm eine solche Ausdeh- nung, weil er zur Anheftung für die starken Beugemuskeln des Abdomens dient, welches bei der Gewohnheit der Thiere, ihr Gift in die mit den Kiefern gemachte Wunde zu spritzen, sehr schnelle und ausgiebige Bewegungen nach vorn machen muß. Verf. versucht es, die Art der Nahrungsaufnahme zu erklären , wobei er sich aber weniger auf directe Beobachtungen als auf Schlüsse aus dem Bau des Pharynx etc. stützt. Da die Nahrung nur flüssiger Natur ist — etwaige gröbere Theile scheinen in der Erweiterung des Pharynx («Mundsack«) zurückgehalten zu werden — so haben die Mandibeln und Maxillen wenig dabei zu thun. Der sogen. Kaumagen ist wohl nur ein »Schließmagen« , um den Rest des Darmes nach vorn abzusperren. — Den Thorax läßt Verf. aus 3 Segmenten, das Abdomen des (^ aus 10, des ^ und der Arbeiter aus 9 Segmenten bestehen. Für den Thorax ist ihm maßgebend nur die Anzahl der Beinpaare ; die Lage der Ganglien spricht weder für die Drei- noch für die Viergliedrigkeit, ebenso wenig thut dies der Bau des Entothorax, und auch die Stigmen (er betrachtet das i. als pro-, das 2. als meso-, das 3. als metathoracales) erlauben keinen sicheren Schluß. Verf. knüpft hieran einen langen Excurs über Anzahl und Lage der Stigmen überhaupt, wobei er allerdings die Literatur nicht völlig berücksichtigt, und macht darin Angaben über eigene Untersuchungen an Imagines und Larven von Coleopteren , Lepido- pteren, Hymenopteren, Orthopteren, Pseudonenropteren, Hemipteren und Dipteren. Auch behandelt er die Frage nach der Segmentation des Insectenkörpers von einem allgemeinen Standpunkte aus, indem er darlegt, daß man in den meisten Fällen nur sagen könne : die Wand des Thorax der Imago geht aus der Wand von 3 Larvensegmenten hervor, da dieser ja im Inneren oft Organe enthält, die eigent- lich dem Abdomen angehören und bei der Larve auch in ihm liegen. Er unter- scheidet daher homonome, polymorphe und heteronome Segmentation. Nach Poletajew bestehen die beiden Spinndrüsen der Blattwespen »aus einer Masse kleiner chitiniger Kügelchen, die mit Seide absondernden Zellen erfüllt sind.« Jede Drüse ist 4-5 mal so lang wie der Körper der Larve; die Zahl der i)Kügelchen« beträgt bei Tenthredo einige 100, bei Cimhex 10000. Der gemein- schaftliche Ausführgang beider Drüsen ist auf dem Querschnitte hufeisenförmig und der Spinnfaden ein einheitlicher, nicht ein doppelter, wie bei den Schmetter- lingen. Bei den letzteren können darum auch die beiden Ausführgänge erst dann zusammentreten , wenn die beiden Fäden bereits erhärtet sind ; daher sind die früheren Beschreibungen unrichtig. Nach Poletajewa soll das Herz der Larve von Cimhex und der Imago von Bom- i? t e r a. A. Biologie, Jugendformen etc. 1. Hülfsmittel. Über Sammeln und Conserviren : Biro [^). 2. Lebensweise.. Mac Lachlan ('^1 theilt mit, daß nach Wilsons Beobach- tung eine Stenopsyche^^. an einem See in Japan kurz vor der Abenddämmerung zalilreich unter die Oberfläche des Wassers taucht und, die Flügel zusammen- schlagend, kräftig schwimmt. Über die Myrmeleoniden siehe Biro (^j. 3. Phänologisches. Große Mengen von Hydropsyche instabilis Gurt, er- schienen nach King (^) am 27. Juli und waren am 31. dess. Monats völlig ver- schwunden. 4. Jahresgenerationen. Die Hydropsyche^"^. erscheinen nach Schneider in 2 Generationen, im Mai und im Spätsommer. Auch Chrysopa vittata Wesm. hat nach Demselben 2 Generationen, im Juni bis Juli und August bis September. 5. Copulation. Poujade bestätigt die Beobachtung Brauers, daß das (J* von Boreus hyemalis während der Copulation das Q. auf dem Rücken trägt. 6. Generelle Lebenserscheinungen. Boreus hyemalis L. springt; King (i), Trail. 7. Jugendformen. Redtenbacher gibt nach einer eingehenden historischeu Darlegung eine detaillirte monographisch gehaltene Darstellung der Morphologie und Biologie der Larve von Myrmeleon europaeus Mac Lachl. Bestätigt werden durch eigene Untersuchungen die Beobachtungen von Oken, Westwood, Hagen, Brauer, Mac Cook u. a. Der Bau des Trichters dauert gewöhnlich nur wenige Minuten, zuweilen 2 1/2 Stunden; fehlerhafte Anlage des Trichters hat unter Um- ständen eine Wiederholung des Baues zur Folge ; solche vom Verf. beobachtete Fälle sind auf der Tafel graphisch dargestellt. Nach Bonuet befördert die Larve einen hinderlichen Gegenstand nicht aus dem Tichter, indem sie sich ihn auf den Rücken schiebt, sondern geht ihm aus dem Wege; sie hält im Grunde des Trichters die Kiefer nicht senkrecht, sondern horizontal. Verf. widerspricht betreffs der Nahrungsaufnahme der »künstlichen« Erklärung derselben von Dewitz ; auch wirken die jederseits aneinander gelegten Ober- und Unterkiefer nicht als Saugrohr allein (Dewitz) , sondern dienen zum Zerreißen der Weichtheile des er- griffenen Insects; von dem ausgesogenen bezw. gefressenen Insect bleibt nur die leere Chitinhülle übrig. Das Ausschlüpfen der Imago aus dem Cocou findet stets in der Dunkelheit, jedoch keineswegs bloß Abends und-Morgeus statt ; die Flügel glätten sich und erstarken bereits in einigen Stunden (Brauer , gegen Nolken) ; die Puppenruhe dauert 4 Wochen. Die Larve von M.formicarius L. und Erheri Br. stimmen in der Lebensweise mit der von europaeus überein, und ebenso auch die von Myrmecaelurus trigrammus Fall, p 19 ; indessen vermag sie nicht bloß rück- wärts , sondern auch vorwärts zu gehen, und ihr Puppenstadium dauert etwa & Wochen. Die Lebensweise der Larven von Formicaleo tetragrammicus Pall... Acanthaclisis occitanica Vill. und Dendroleon pantherinus F. ist p 21-23 beschrie- ben. Ein ziemlich sicheres Zeichen für die Zugehörigkeit einer Larve zu den Trichter bauenden Arten ist die reichere Beborstung am Innenrande der Kiefer, 8. Hexapoda. IV. Neuroptera. B. Faunistik und Systematik. 185 welche dem aufzuwerfenden Sande als Sieb dient. — Birö ['") handelt über die Larven der ungarischen Myrmeleoniden Acanthaclisis occitanica Vill. , Dendroleon pantherinus Yhx . , Formicaleo tetragrammicusYhx., Myrmecaelurus trigrammusVaXl., Myrmeleon Erberi Br,, europaeus Mac Lachl. und formicarius L. Eine kurze Characteristik der Myrmeleonidennymphen liefert Brauer p 318, der Tricho- pterenlarven und -nymphen p 318 und 371, der J/a?2ijs/jffilarven p 318, der Pauorpidenlarven und -nymphen p 134, Hemerobms nsrvosus wurde nach Flet- cher (') aus einer alten Galle von Cynips KoUari erzogen ; Hemerobius inconspicuus Mac Lachl. nach Sang aus altem Fichtenharz. Die feinen Rückenhaare der ChrysopaXoxYQXi. bilden » Angelhaken « , welche dazu dienen, fremde Körperchen festzuhalten , die sie mit einem Gespinnste um- geben und so die bekannte schützende Decke improvisiren ; Dewitz. Nach Mor- ton (^) hat die Larve von Beraea pullata , deren systematische Stellung immer schwankend war, die Charactere der Leptoceridenlarven , wonach also Beraea definitiv zu dieser Gruppe gehört; Verf. macht ferner Bemerkungen über die Larvengehäuse von Adicella ßlicornis und Crunoecia irrorata. Das Gehäuse von Lejndostoma hirtum ist nach Morton [^) vierkantig, wie bei Brachycentrus und Crunoecia irrorata. LOW erzog und beschreibt die bisher noch unbekannte Larve von Aleuropteryx lutea Wallgr. (Coniopterygidae) , welche von Schildläusen lebt und sich von den Coniopteryxlsivven durch die an die Osmyluslarven erinnernden langen Saugzangen etc. unterscheidet. Vergi. ferner: Trybom. B. Faunistik und Systematik. L Allgemeine Faunistik. Über die Verbreitung der Neuroptera in den arctischen Ländern stellt Auri- villius die bisherigen Ergebnisse zusammen. Die bisher nur aus der alten Welt bekannt gewesenen Nemopteridae sind nach Mac Lachlan {"^'j nun auch in Chili gefunden. Die Trichoptera sind nach Meyrick am Kosciusco (Australien) nicht so häufig als in Tasmanien; die wenigen Sp. waren mit denen am Snowy-River identisch. Den Bestand der Neuroptera Megaloptera des australischen Continents gibt Ger- stäcker (^) auf etwa 100 Sp. an: Ascalaphidae mit Stiphalasca Lefeb. 12 Sp. ; Myrmeleonlidae mit >%»75c>;;^eryx Newm. 1, Acanthaclisis RSimh. ?, , Protoplectron Gerst. 1, Formicaleo Leach 2, Episalus Gerst. 2, Myrmeleon L. 20, Creagris Hg. 1, Macronemiirus Costa 1, Gymnocnemia Schneid. 4; Nemopteridae mit Nemoptera Latr. 1 ; Maniispidae mit Mantispa 111. 10, Theristria Gevst. 5, Drepanicus Blanch. 1; Nymphidae mit Nymphes Leach 2, Nesydrion Gerst. 2, Myiodactylus Brauer 5; Osmylidae mit Osmylus Latr. 1 , Stenosmylus Lachl. 3 ; Chrysopidae mit Porismus Lachl. 1, Chrysopa Leach 7, Apochrysa Schneid. 1, Ancylopteryx Brauer 1 ; He- merobiidae mit Ithone Newm. 2, Psychopsis Newm. 4, Drepanopteryx Biirm. 3, Megalomus Ramb. 1, Micromus Ramb. (^) und Hemerobius L. 2. — Bittacus ist über alle 5 Erdtheile verbreitet, Panorpa hingegen ist in Australien durch Chorista Klug und -EWpÄama Westw. ersetzt; Gerstäcker [^). 2. Pannen. Paläarctische Region. Arctische Länder: Neuroptera Aurivillius — Großbritannien: Schottland: Pau- orpidae King ('), Trail; Hemerobiidae Morton [^) ; Trichoptera King (^j, King & Morton — Berwickshire: Panorpidae Hardy — Worcestershire: Planipennia Fiet- J[g6 Arthropoda. eher (^) ; Trichoptera Fletcher (2) — Themse: Trichoptera Mac Lachlan {^) — Invernessliire : Triclioptera King (^) — Hebriden: Trichoptera King & Morton — Belfast: Trichoptera Mac Lachian '^') — Vogesen: Trichoptera, Hemerobiidae Mac Lachlan (^^) — Bitche : Neuroptera Kieffer — Schlesien : Trichoptera, Myr- meleontidae, Osmylidae, Hemerobiidae, Chrysopidae, Coniopterygidae, Sialidae, Panorpidae Schneider — Österreich: Coniopterygidae LÖw; Myrmeleontidae Redtenbacher — Ungarn : Myrmeleontidae Birö (^) — Ost-Karpathen : Panorpi- dae Birö (^, ^) — Brescia: Ascalaphidae, Myrmeleontidae^ Chrysopidae, Panor- pidae Bettoni — Sardinien : Chrysopidae, Trichoptera Costa — St. Pietro bei Sardinien: Myrmeleontidae Carlini — Algerien: Myrmeleontidae Saalmüller — Trichoptera Mac Lachlan {^). Orientalische Region. Darjeeling : Panorpidae Gerstäcker (2) . Australische Region. Australien : Ascalaphidae, Myrmeleontidae, Nemopteridae, Mantispidae, Nym- phidae, Osmylidae, Chrysopidae, Hemerobiidae Gerstäcker (^) ; Panorpidae Gerstäcker (^j — Rockhampton : Nymphidae, Hemerobiidae, Chrysopidae, Myr- meleontidae, Mantispidae Gerstäcker {^) — Peak Downs: Ascalaphidae, Myr- meleontidae Gerstäcker (') ; Panorpidae Gerstäcker {^) — Bowen: Nymphidae Gerstäcker (\1 — Moimt Kosciusco, Snowy River und Tasmania : Trichoptera Meyrick. Äthiopische Region. Congo: Myrmeleontidae Mac Lachlan (^) — Kalahari-Wüste : Myrmeleontidae Weir (1). Neotropische Region. Chili: Nemopteridae Mac Lachlan (^ *) — Argentinien: Neuroptera Weyen- bergh. Nearctische Region. Arctische Länder: Neuroptera Aurivillius — Canada: Myrmeleontidae Moffat. 3. Systematik der Ordnung. Brauer trennt die Ordnung in die 3 Ordnungen Neuroptera s. str. (Megaloptera et Sialidae), Panorpatae und Trichoptera. Vergl. ferner: Bettoni, Brongniart (i), Costa, Fletcher (i), Kiefer, Kusta, Mac Lachlan (lo), Schneider, Scudder {\'^). 4. Systematik and Fannistik der Familien. a. Subordo Trichoptera. Eine Characteristik gibt Brauer. — Faunistische Verzeichnisse liefern King & Morton (als Schluß) von Schottland und Hebriden, Mac Lachlan (^) von Belfast, Schneider von Schlesien. — Vergl. ferner: Geinitz, Meyrick, Trybom. Familie Phryganeidae. Vergl. Schneider. 8. Hexapoda. IV, Neuroptera. B. Faunistik und Systematik. 187 Familie Limnophilidae. Mac Lachlan (^) verzeichnet Arten von Limnopkilus und Stenophylax von Bel- fast; id. ('•*) Limnopkilus ßavicornis F., Anaholia nervosa var. excisa Hg. und var. Pufoni M'Lachl., Stenophylax alpestris Kol. und luctuostis Pill., Halesus digitatiis Schrank und sp. n. ?, Anomalopteryx Chauviniana Stein und Enoicyla pusilla Burm. aus den Vogesen. Halesus sp. n. ? (aut uncatus Br. var.?) und A7iomalopteryx Chauviniana sind kurz beschrieben. Limnopkilus luridus auf den Hebriden; King & Morton. — Vergl. ferner Schneider. Familie Sericostomatidae. Mac Lachlan (^) verzeichnet Sp. von Silo^ Lepidostoma und Crunoecia von Bel- fast; id. (loj Sericostoma timidum Hg. ? aus den Vogesen. Vergl. ferner; Mor- ton (S^) und Schneider. Familie Leptoceridae. Fletcher (^) fügt dem früheren Verzeichnisse der Trichoptera von Worcester- shire Oecetis testacea u. notata hinzu, so daß die Zahld. Sp. jetzt 73 beträgt. MaC Lachlan (^) verzeichnet Arten von Beraca und lfysfec?W(?s von Belfast ; id. [^^) Triaenodes hicolor Gurt, aus den Vogesen, King & Morton Beraea pullata und Leptocerus bilineatus von den Hebriden, sp. von Mystacides, Triaenodes, Adicella und Oecetis aus Schottland. 5emea gehört nach Morton (') auf Grund der Larven- charactere zu den Leptoceridae. — Vergl. ferner Schneider. Familie Hydropsychidae. Mac Lachlan (^) verzeichnet' Lype reducta Hg. von der Themse; id. ('^) Arten von Diplectrona., Philopotamus , Polycentropus^ Cyrnus und Tinodes von Belfast; King & Morton Wormaldia occipilalis, Cyrnus trimaculatus und Lype phaeopa von den Hebriden, sp. von Hydropsyche, Diplectrona, Philopotamus, Wormaldia, Plectro- cnemia, Polycentropus, Hohe entr opus, Cyrnus, Pinodes, Lype und Psychomia aus Schottland. Costa Hydropsyche fulvipes Gurt, von Sardinien. — Vergl. ferner Mac Lachlan {^), King [^] und Schneider. Familie Rhyacophilidae. Mac Lachlan (*") verzeichnet Arten von Rhyacophila nnäAyapetus, id. {'O] Rhya- cophila ohliterata M'Lachlau aus den Vogesen. — King & Morton sp. von Chi- marrha, Rhyacophila, Glossosoma und Agapetus aus Schottland. — Vergl. ferner Schneider. Familie Hydroptilidae. King (^) verzeichnet Hydropiila longispina M'Lachl. aus Schottland; King & Morton 9 sp. von ebendaher. — Vergl. ferner Schneider. b. Subordo Panorpma. Eine Gharacteristik gibt Brauer p 349, 369-371. — Gerstäcker (2) schreibt über die Panorpiua Australiens (l n. g. und 2 n. sp.). Birö (2,^) erwähnt das Vorkommen von Boreus hyemalish. und Panorpa alpina Ramb. in den Ost-Kar- pathen; King (^) Boreus hyemalis L. bei Killin, Trail bei Aberdeen und Hardy in Berwickshire, Schottland. — Vergl. ferner Bettoni, Fletcher (^) , Geinitz, Packard, Poujade und Schneider. 188 Arthropoda. Bittacus microcercus v. (^f Peak Downs, Australien p 1 19 ; anstralis Klg. uud nlgricein de Sei. zu Harpobitiacus n. p. 119; htijiejinis n. Daijeeling p 120; 6er- stäcker {^). HarpoUttacus n. Flügel sehr schmal, Rumpf auffallend kräftig. Zahlreiche Quer- adern im Apicaldrittel der Flügel. Schenkel der Hinterbeine sehr verdickt, Tarsen kräftig. Metatarsus nur wenig länger als jedes der beiden folgenden Glieder (2 und 3.), aber beträchtlich kürzer als das stark angeschwollene 4. Glied. Gerstäcker (2) p 119. c. Subordo Sialiua. Vergl. Brongniart (i,^), Fletcher (i), Hagen (^), Schneider, Scudder (*). d. Subordo Megaloptera. Eine Characteristik gibt Brauer p339, 349, 367-369. — Gerstäcker ') beschreibt australische n. sp. aus den Familien Mantispidae, Hemerobiidae, Chry- sopidac; Nymphidae, Myrmeleontidae und Ascalaphidae. Familie Mantispidae. Mantispa pictiventris n. (J^ Rockhampton; Gerstäcker (^) p 103. Theristria eurysticta n. § Sydney und Rockhamptou; Gerstäcker (^) p 105. Familie Coniopterygidae. LOW beschreibt eine neue Larve, liefert eine Uebersicht der 4 europäischen Sp. und gründet auf Coniopteryx lutea Wallgr. ein n. g. Als sicher unterschiedene Sp. Europas gelten nur C. aleurodiformis Steph., psociformis Curt. und lactea Wesm. Die bisherigen Unterscheidungsmerkmale, Größe und Färbung des Leibes und der Flügel, die Länge und Gliederzahl der Antennen, sowie die Farbe der Bestäubung der Flügel sind nach dem Verf. nicht constant. Die systematisch allein maß- gebende Flügelnervatur ist eingehend erläutert. Die Lippentaster sind bei allen Arten, entgegen der bisherigen Annahme, nicht 3-, sondern 4-gliedrig; das 4. Tarsenglied ist nicht herzförmig (v. Schlechtendal 1883), sondern scheibenförmig. Die 2 gen. und die 4 sp. sind beschrieben und abgebildet. — Vergl. ferner Fletcher (^) und Schneider. Aleuropteryx n. Kopf wenig schmäler als der Thorax; 2. Antennenglied beim rf unten mit einem Zahn; in den Vorderfltigeln der Sector radii ungetheilt, der Cu- bitus in 3 Äste getheilt, das Discoidalfeld mit 2 Queradern; LOW p 79. Coniopteryx lutea Wallgr. zu Aleuropteryx p 81; iineiformis Curt. = lactea Wesm. und aleurodiformis Steph. p. 87; haematica M'Lachl. = lactea Wesm. p 88; LOW. Familie Osmylidae. Vergl. Gerstäcker {^) und Schneider. Familie Hemerobiidae. Fletcher (') erwähnt Arten von Hemerobius und Micromus und macht dazu bio- logische Mittheilungen. Drepanopteryx phalaenoides, der auf dem Coutinent weniger selten vorkommt, ist in Großbritannien eine locale Species und neuerdings wieder in Schottland entdeckt; frühere Funde sind aufgezählt. Mac Laclilan ("^j er- 8. Hexapoda. IV. Neuroptera. B. Faunistik und Systematik. 189" wähnt aus den Vogesen Hemerohms nitiduhisY., nervosns F. und eine Varietät von co??mi?n/s Stepb., welche kurz beschrieben wird. — Vergl. ferner Gerstäcker (1), Sang und Schneider. Megalormis lanceolatus n. Sydney; Gerstäcker (^) p HO. 31icromtis vinaceus n. Rockhampton; Gerstäcker (') p 111. Familie Chrysopidae. Fletcher (^) zählt Arten von Chrysopa aus Worcester auf und bespricht die Modification der Cubitalzellen und der kleinen benachbarten Queradern bei Chryso- pöarten , unter denen Ch. phyllochroma var. den Character you Nothochrysa \)q- kommen hat; ferner die Veränderlichkeit der Flecken am Vorderkopf von Chryso- paßavifrons. Costa fand in Sardinien Chrysopa septemptindata V^esm. [Chryso- pa sp. ind. Costa [vergl. Bericht f. 1884 H p 203]). — Vergl. ferner Bettoni, Dewitz, Gerstäcker (') und Schneider. Chrysopa stictoneura n. Rockhampton; Gerstäcker (^) p 108 — alba var., phyllo- chroma ya.\' . , ßavifrons var. p 258; Fletcher ('). Familie Nymphidae. Vergl. Gerstäcker (i). Nesydrion diaphannm n. Bowen, Australien; Gerstäcker (^) p 108. Nymphes modesta u. Rockhampton; Gerstäcker (') p 106. Familie Nemopteridae. Mac Lachlan (S^), bespricht die gesonderte Stellung, die generische Eintheilung und die geographische Verbreitung der Nemopteridae und gründet 2 n. g. Zu Nemoptera gehören nur Coa L., lusitanica Leach, aegyptiaea Ramb. [hebraica Westw.) und simiata Ol.; Halter enthält noch viele nicht dazugehörige Arten. — Vergl. ferner Gerstäcker (^j. Croce n. Rostro elongato, antennis brevibus, apicem versus leviter incrassatis, alis anticis transparentibus, nervatura latiore, alis posticis setiformibus, nervis om- nino destitutis; Mac Lachlan C) p 378. Nemoptera alba Oliv., aristata'Klwg, capilla?-isK\l\g, se^fleca Klug und joMSjV^aTaschenb .. zu Croce n. ; Mac Lachlan (') p. 379. Stenotaejiia n. [Brachystoma Ramb. ?, nom. praeocc.) Antennis sat brevibus, setaceiS;^^ articulis apice excepto distinctis, fronte, clypeo, labro brevissimis; alis anticis transparentibus, nervatura sat densa, posticis longissimis, angustis, apice haud dilatato, p. 376; Walkerin. Coquimbo, Chile p 377; Mac Lachlan (^). Familie Ascalaphidae. Gerstäcker (^) beschreibt Suphalasca nn. spp. aus Australien. Vergl. ferner Bettoni und Brongnlart (1). Asialaphus [Hybris Lefebr.?) cervinus Hg. zu Svphalasca] Gerstäcker {}) p 88. Suphalasca specfabilis n. ([j^ Peak Downs p 84; laeta n. Q Sydney p 85; moesta n. (^ Peak Downs p 87; Gerstäcker (^). 190 Arthropoda. Familie Myrmeleontidae. Gerstäcker (') gründet ein n. g. auf eine ostindische Sp. und beschreibt un. spp. Fonnicaleo, Myrmeleon^,Creagris, Gp)i7wc7iem{a wnd Acanthaclisis aus Australien. Mac Lachlan (^') beschreibt Gymnocmmia n. sp. ; die Zahl der Myrmeleontidae ohne Sporn an den Schienen ist beschränkt; vielleicht gehören nicht alle durch das Fehlen desselben characterisirte Species zu Gymnocnemia. Biro (^) gibt eine synoptische Tabelle der bekannten Larven der ungarischen Myrmeleontiden ; Verf. liefert synoptische Tabellen der 10 sp. in 7 gen., bescheibt die sp. unter Bei- fügung der Synonymie und der Angabe ihrer Verbreitung in Ungarn; es sind: Acanthaclisis occitanica Vill., Meyistopus ßaviconiis Rossi, Creagris plumbeus 0\., Formicaleo tetragrammicus Fbr., Mynnecaelurus punctulatus Stev., M. trigrammus Fall., Dendroleon pantheriniis Fbr., Mynneleon europaeus M'Lachl., M . formicarius L. und M. Erberil^w Weir (') erwähnt einen Palpares aus der Kalahari-Wüste, Saalmüller Myrmeleon libelluloides L. [Palpares L.] und M. pallidipejinis Ebr. [=? pallidipennis Brülle, Creagris pluinbeus 01.1, Carlini Myrmeleon appendictdatus hSitr. [3facronemurus] von der Insel St. Pietro bei Sardinien. — Moffat macht popu- läre Bemerkungen über canadische Myrmeleontiden.. — Vergi. ferner Bettoni^ Redtenbacher, Schneider. Acanthaclisis conspurcata n, Q Bowen und Rockhamptou p 88; inclusa Walk, zu Stiphroneura n. p 91 ; conspurcata n. = "^ fundata Walker p 112 ; Gerstäcker (^). Creagris nubecula n. Rockhampton ; Gcrstäckcr (^) p 101. Formicaleo septus n. Peak Downs ; Gcrstäcker (') p 91. Gymnocnemia tipularia n. Peak Downs ; Gerstäcker p 101 (') — africana n. ^ Vivi, Congo; Mac Lachlan [^) p 25. Myrmeleon illustris n. Sydney p 92 ; comptus n. Peak Downs p 94 ; pictifrons n. p 96 ; amabilis n. p 97; congestus n, p 99; breviuscuhis n. Sydney p 100; illustris n. = ? erythrocephalus Leach und giittatus Ramb. ; croceicollis Gerst. = ? tigrinus Fbr. p 112; Gerstäcker (*). Stiphroneura n. vaii Acanthaclisis nahe verwandt; Antennen schlanker, am Ende nicht keulig vei'dickt; Hinter- und Vorderflügel gleich lang, Nervatur reicher entwickelt ; die Zellenreihen im Costalraum der Vorderflügel bis gegen die halbe Flügellänge durch eine fast gerade Längsader geschieden; Gerstäcker (^) p 91. C. Paläontologie. Carbon. Brongniart [^) bespicht den Corydaloides Scudderi n., welche Gattung durch die an den Seiten der Abdominalsegmente hervortretenden Tracheenkiemen ausge- y.eichnet ist. Palaeocampa gehört nach Packard nicht zu den Myriopoda, sondern ist die Larve eines mit den Panorpidae verwandten Neuropteron. Kusta beschreibt einen wahrscheinlich einem neuropteroideu Insect angehörenden Flügel aus dem Nöggerathienschiefer von Rackonitz — Vergl. ferner Brongniart (', -; und Scud- der (^) und [^] unter »Pseudo-Neuroptera«, s. oben p 181 ff, Lias. Geinitz beschreibt aus den Dobbertiner Schichten in Mecklenburg Orthophlebia megapolitana E. Gein. p 572 Fig., O. [Phryganidium) furcata Gieb. p 573 Fig., O. [Phryganidium) intermedia Gieb., p 574 Fig., Phryganidium balticum E. Gein. p 575, Trichopteridium gracile E. Gein. p 528, Hagla [Chaxdiodes) similis Gieb. und einige u. sp. von Orthophlebia und Phryganidium. 8. Hexapoda. Y. Strepsiptera. VI. Orthoptera. 191 Orthophlehia parvula n. Dobbertiner Lias ; Geinitz p 573 Fig. Phryganidium ')ni7iimum E. Gein. = Orthophlehia furcata Giebel p 573; {^. Polycen- tropus) perlaeforme n. p 575 Fig. ; [Hydropsyche] Seehachi u. Dobbertiner Lias p 576 Fig.; Gelllitz. Y. Strepsiptera. (Referent: H. J. Kolbe in Berlin.) Brauer, Friedrich, Systematisch-zoologische Studien, in: Sitz. Ber. Akad. Wien 91. Bd. p 237—412. [191] Smith, J. B., Stylopidae. in: Entomologica Amer. Vol. 1 p 38. [191] Die Strepsiptera sind nach Brauer p 335 ein aberranter Zweig der Familie Malacodermata (Coleopteraj . Smith macht bekannte Mittheilungen über Stylopidae, speciell über Xenos Peckü. ■ VI. Orthoptera. (Referent: Dr. Herrn. Kr auß in Tübingen.) Über Anatomie etc. vergl. die Referate auf p 14.5, über allgemeine Insectenkunde am Schlüsse der Abtheilung. Bell, F. Jeffrey, Note on a Nematoid Worm (Gordius verrucosus) obtained by Mr. H. H. Johnston on Kilima-njaro. in: Proc. Z. Soc. London p 236. [194] Bolivar, Ignacio, 1. Diagnoses d'Orthopteres nouveaux. in: Natural. Paris 7. Annee p 116 —117. [196, 197, 199,200] , 2. Observations sur le Gryllodes littoreus n. sp. ibid. p 174. [193, 200] Bonnet, Ed., A. de Bormans, Materiali per lo studio della Fauna Tunisina. VII. Orthopteres. ibid. p 143—144. [197] Bonnet, Ed., & Ad. Finot, Catalogue raisonne des Orthopteres de la Regence de Tunis, in: Revue Sc. N. Montpellier (3) Tome 4 p 193—232, 333—367 T 7, 16. [193—195, 197 —199] Bormans, A. de, 1. Materiali per lo studio della Fauna Tunisina raccolti da G. e L. Uoria. VXI. Orthopteres. in: Ann. Mus. Civ. Genova (2) Vol. 2 p 97—115. [195, 197, 199] , 2t Orthopteres recoltes par M. Weyers ä Sumatra, in: C. R. Soc. Ent. Belg. (3) Tome 29 p 24—25. [193, 195] ■ , 3. Rectification ä la liste des Orthopteres recoltes dans l'Afrique Australe par M. de Selys-Fanson. ibid. p 60—61. [195] Brauer, Friedrich, Systematisch-zoologische Studien, in: Sitz. Ber. Akad. Wien 91. Bd. p 237—413 1 Taf. [196, 200, 202] Brongniart, Gh., 1. Insecte silurien. in: Ann. Soc. Ent. France (6) Tome 4 1884 Bull. p 158—159. [200, 201] , 2. Sur la decouverte d'une empreinte dTnsecte dans les gres siluriens de Jurques (Calvados), in: Compt. Rend. Tome 99 1884 p 1164—1165 ; und in: Bull. Sc. Dep. Nord (2) 7.-8. Annee p 146—148. Ref. in: Ann. Mag. N. H. (5) Vol. 15 p 355. [200, 201] , 3. Les Insectes fossiles des terrains primaires. Coup d'oeil rapide sur la faune ento- mologique des terrains paleozoiques. in : Bull. Soc. Amis Sc. N. Rouen p 50 — 68 T 1—5. [200-203] ] 92 Arthropoda. Bruner, Lawrence, 1. Tavo newMyrmecophilae from the United States, in: Canad.Entomol. Vol. 16 1884 p 41—43 Figg. ^194, 200] , 2. Contributions to the North Trans - Continental Surve}-. ibid. Vol. 17 p 9 — 19. [196—198] * , 3. First Contribution to a knowledge of the Orthoptera of Kansas, in : Washburn Coli. Biol. Survey of Kansas p 125—129. Brunner von Wattenwyl, C, über das Stimm- und Gehörorgan der Heuschrecken, in: Sehr. Ver. Verbreit. Nat Kenntn. Wien 24. Bd. 1884 p 461—474 Figg. [194] Bucchich, Greg., Gli Ortotteri di Lesina e Curzola, con alcune notizie biologiche che li ri- guardano. in: Verh. Z. Bot. Ges. Wien 35. Bd. p 377—382. [195—197] Carlini, Angelo de, Artropodi dell' Isola di S. Pietro. in: Bull. Soc. Ent. Ital. Anno 17 p 192—196. Ortotteri p 195. [195] Costa, Achille, Notizie ed Osservazioni suila Geo-Fauna Sarda. IV. in: Atti Accad. Napoli ;2) Vol. 1 31 pgg. Ortotteri p 5, 14 — 15. [Diagn. der n. sp. abgedruckt in: Bull. Soc. Ent. Ital. Anno 17 p 241—242. [199] Geinitz, F. Eugen, 1. Der Jura von Dobbertin in Mecklenburg und seine Versteinerungen. in: Zeit. D. Geol. Ges. Berlin 32. Bd. 1880 p 510—535 T 22. Orthoptera p 519 —523. [200—202] , 2. Die Flötzformationen Mecklenburgs, in : Arch. Freunde Naturg. Mecklenburgs 37. Jahrg. 1883 p 1—151 T 6. Orthoptera p 29—31. [201] , 3. Über die Fauna des Dobbertiner Lias. in: Zeit. D. Geol. Ges. Berlin 36. Bd. 1884 p 566—583 T 13. Orthoptera p 569—572, 580. [200—202] Goss , Herb., On the recent discovery of the wing of a Cockroach in rocks belonging to the Silurian period. in: Ent. Month. Mag. Vol. 21 p 199—200. [Übers, in: Ent. Zeit. Stettin 46. Jahrg. p 134—136.] [200] Gronen, D., Die diesjährige Heuschreckenplage in Californien. in: Z. Garten 26. Jahrg. p 312—315. [194] Karscli, F., 1. i^^iW/croMa i^iMsc/i/ n. sp., eine neue Forficulide Nord- Australiens, in: Ent. Nachr. 11. Jahrg. p 322—323. [196] , 2. Eine neue Forficulide Madagascars. ibid. p 323—324. [193] Kusta, J., Über eine Blattina aus der Lubnaer Gaskohle, in: Sitz. Ber. Böhm. Ges. Wiss. Prag 1883 8 pgg. 1 Taf. [200, 201] Lucas, H.j- 1. [Note sur une nouvelle espece du genre Eugaster]. in: Ann. Soc. Ent. France (6) Tome 5 Bull, p 91—92. [199] , 2. [Note sur Ephippigera vitium Serv.]. ibid. p 199. [193] Mc Coo1(, H. C, Note on the Intelligence of a Cricket parasitized by a Gordius. in : Proc. Acad. N. Sc. Philadelphia 1884 p 293—294; und in: Ann. Mag. N. H. (5) Vol. 15 p 275—276. [193] Mc Coy, Frederick, 1. Prodromus of the Zoology of Victoria; or Figures and Descriptions of the living species of all classes of the Victorian indigenous animals. Melbourne, Decade 7 1882. Phasmidae p 33—37 T 69, 70. [197] , 2. ibid. Decade 8 1883. Phasmidae p 33—36 T 79, 80. [197] Pacicard, A. S., Flights of Locusts in Eastern Mexico in 1885. in: Amer. Natural. Vol. 19 p 1105—1106. [194] Osten-Sacl(en, C. E., s. Stepanoff. Passerini, N., Sulla morte degli Insetti per inanizione, esperienze. in: Bull. Soc. Ent. Ital. Anno 17 p 217-228. 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J., Über die Verwandlungen der Zweiflügler aus der Familie der Bombyliden. in: Verh. Nat. Ges. Kharkoff Vol. 15 1881 9 pgg. 1 Taf. [Russisch.] Ref. n. Osten-Sacken, C. R., Bericht über eine in russischer Sprache erschienene dipterolo- gische Arbeit, in : Wien. Ent. Zeit. 4. Jahrg. p 9 — 10. [194] Townsend, C. H. T., On the courtship of the sexes in Oedipoda Carolina, in; Canad. Entomol. Vol. 16 1884 p 167—168. [193] Trimen , Roh. , 1. Protective resemblances in Insects. in: Entomologist Vol. 18 p 25 — 30. [Übers, in: Ent. Zeit. Stettin 46. Jahrg. p 290—295.] [194] , 2. Mimicry in Insects. ibid. p 57—65. [Übers, ibid. p 296—304.] [194] Vängel , E., [Onconotus Servillei Fisch. W.]. in: Rovart. Lapok Budapest 2. Bd. p 18. [193] Waterhouse , Charles O., On the Insects collected on Kilima-njaro by Mr. H. H. Johnston. in: Proc. Z. Soc. London p 230—235 T 15. Orthoptera p 235. [196] A. Biologie. 1. Lebensweise; besondere Gewohnheiten etc. Nach Bonnet & Finot fliegt Eremobia insignis Lucas sehr gut und bringt dabei ein Geräusch liervor ähnlich dem eines kleinen Vogels beim Fluge. Townsend beobachtete im August und September, wie sich vermuthlich die (^f Individuen von Oedipoda Carolina L. in den IMittagsstunden bis zu 6 Fuß über den Boden erhoben, sodann mit raschem Flügelschlage meist an einer Stelle schwebten, wobei sie einen eigenthümlich schnarrenden Ton hervorbrachten, und dann wieder zur Erde zurückkehrten ; er hält dies für Liebesbewerbungen derselben gegenüber den Q . Nach Passerini blieb Acridium lineola 9-87 Tage lang ohne Nahrung am Leben und nahm dabei an Gewicht um 0,15-0,97 Gramm ab. Nach Mc Cook entledigten sich große Heu- schrecken [spec. ?] im Spätherbst des in ihnen lebenden Gordius, indem sie am Rande eines Wassereimers sitzend die Spitze des Hinterleibes ins Wasser tauchten und unter heftigen pressenden Bewegungen den Wurm ins Wasser hinein gebaren. Wie Vängel beobachtete, fraß das Onconotus Servillei Q, das bei der Begattuno- auf dem (J' saß, dieses unmittelbar nachher auf. Bonnet & Finot berichten über die Lebensweise von Eugaster Guyonii Serv. Bei Gefahr spritzt er eine orange- gelbe kaustische Flüssigkeit aus einer beiderseits an den Seitentheilen des Meso- sternum hinter den Vorderfüßen angebrachten Öffnung bis 1 5 cm weit und wieder- holt dies noch 1-2 mal, wobei jedoch die Flüssigkeit in geringerer Menge zum Vorschein kommt. Dieselben besprechen die Lebensweise von Brachytrypes megacephcdiis Lef. , dessen Larven sie Anfangs Juni in einem offenen Erdgange antrafen. Nach Lucas ("^) hält Ephippigera vitium ihre Antennen in meist ununter- brochener Bewegung. Bormans (^j berichtet, daß Rhaphidophora picea Serv. in Höhlen auf Sumatra lebt. Bolivar C^) schildert die Lebensweise von Grylhdes Zool. Jahresbericht. 1885. II. ]3 194 Arthropoda. Ittioreusn. und ^;i)j/ens Duf. Nach Bruner (') leben die beiden nordamericanisclien 3Ii/rinecopMlaarten [Pergandei n. , oregonensis n.) in den Nestern verschiedener Ameisen (Camponotus pennsylvanicus , Formica rufa , Cremastogaster lineolata) , im Holz oder unter Steinen an feuchten Plätzen. 2. Stridulation. Brunner gibt eine populäre Darstellung der Stimm- und Gehörorgaue der Heuschrecken und bespricht das Vorkommen und Zirpen des Callimenus Pancici bei Nisch. Bonnet & Finot schildern die Stridulation von Finotia spinicollis Bonn. , Engaster Guyonii Seiv. , Ephippiger Innocentii n. ; Brachytrypes megacephalus Lef. zirpt im Süden von Tunis nie vor Beginn der Dunkelheit. 3. Schützende Ähnlichkeit. Nach Trimen (\ gleicht der bei Grahams- town häufig auf Steingeröll vorkommende Batrachotetrix bufo in Farbe, körniger Oberfläche und seiner Gestalt genau den Steinen, auf denen er lebt, und ist bald dunkel, bald hell, bald gefleckt je nach der Farbe des Gesteins. Die in Natal heimische Phyllocrania paradoxa ist eine getreue Copie von vertrockneten Blättern, während die Jungen von Harpax ocellata von Durban die größte Ähnlichkeit mit der Blume einer purpurfarbenen Composite haben. 4. Mimicry. Trimen ('^j beobachtete in Natal eine Mantis, die in ihrer Ge- stalt gewisse Phasmiden nachahmt und deren Fang-Vorderfüße in Form und Haltung denen eines Bacillus, mit dem sie zusammen vorkommt, gleichen. 5. Massenhaftes Auftreten, Schaden. Nach Bonnet & Finot ver- ursacht die Wanderheuschrecke iwohl Schistocerca peregrina Oliv.) im Süden der Regentschaft Tunis, insbesondere im Djerid, ab und zu größere Verheerungen. Die letzte Invasion fand daselbst vor 5 oder ü Jahren statt und wurden dabei insbe- sondere Gerste, Cactus', Feigen und selbst Dattelpalmen verwüstet. Acridium americanum (?, trat, wie Packard mittheilt, in den letzten 2 oder 3 Jahren ver- wüstend in Central-America auf und dehnte seine Wanderzüge vor 2 Jahren bis Mexico aus, wo in den Bezirken von Vera Cruz, Oaxaca, Chiapas, Morelia, Mi- choacan und in den dazwischen gelegenen Landstrichen bis Matamoras großer Schaden angerichtet wurde. Auch im September 1S&5 wurden verwüstende Heu- schrecken-Schwärme im östlichen Mexico beobaphtet. Die Schwärme kamen von Central-America zwischen April und November ; die Eiablage fand im April und Mai statt und die Jungen erschienen nach 20-30 Tagen. Sie wandern in dichten Massen und siud besonders den jungen Kaffeepflanzen schädlich, an denen sie die Rinde abnagen, die Blätter dagegen unberührt lassen ; außerdem litten Orangen, Palmen, Korn, Reis, Tabak. Nach ungefähr 3 Monaten sind sie ausgewachsen. Gronen bespricht das schädliche Auftreten von Heuschrecken [spec. ?] in Califor- nien [iSS5?| und zählt die Heuschreckenjahre in Ober- und Uuter-Californien auf. Sie sollen meist in 2 aufeinander folgenden Jahren erscheinen. Riley ver- breitet sich über Caloptenus atlanis, seine Verheerungen im Merrimac Valley (New Hampshire), gibt eine kurze Lebensgeschichte der Art und erörtert ihre natür- lichen Feinde und die Mittel zur Ausrottung. 6 . Parasiten. Bell fand Gordius verrucosus in Idolum diabolicuni vom Kilima- njaro, in Mantis membranacea von Ceylon und in Hierodula bioculata von West- Africa. * Stepanoff beobachtete in Süd-Rußland in den Eiersäcken von Stauro- notus vastator Steven die Larven von Systoechus leucophaeus Meig. (?) und Mulio obscurns Meig., in denen von Pachytylus migratorius die Larve von Anthomyia radicum. Nach ^Schimkewitsch ist Systoechus nitidulus Parasit von Stauronotus. Vergl. auch JVic Cook. 8. Hexapoda. VI. Orthoptera. B. Faunistik und Systematik. l 95 B. Faunistik und Systematik. 1. Allgemeine Fannistlk. Nach Bormans (*) kommen von 53 in Tunis aufgefundenen Arten 38 auch in Sicilieu, 13 in Algier , 1 in Süd-Rußland und Turkestan vor. Auch Bonnet & Finot erörtern die Beziehungen der Orthopterenfauna von Tunis zu den Faunen anderer Länder und kommen zu dem Resultat, daß sie der von Algier am näch- sten steht, indem Yio ^^^ Arten sich auch in Algier vorfinden. 2. Fannen. Paläarctisch e Region. Europa: Dalmatien (Lesina, Curzola): Forficulidae, Blattidae, Mantidae, Phasmidae, Tryxalidae, Oedipodidae, Acrididae, Phaneropteridae, Meconemidae, Locustidae, Decticidae , Ephippigeridae, Sagidae, Stenopelmatidae, Gryllidae, 63 sp. mit Angaben über Vorkommen und Lebensweise Bucchich — Frankreich: Ephippigeridae Lucas (^) — Finland: Oedipodidae 1, Acrididae 1, Decticidae 1 sp. Reuter — Portugal: Ephippigeridae Bolivar (') — Rußland: Oedipodidae *Stepanoff — Sardinien: Decticidae Costa; (Insel St. Pietro) Forficulidae 1, Blattidae 2, Phasmidae 1, Acrididae 4, mit Ausnahme von Forßcula lurida [? Ref.] schon von Sardinien bekannt Carlini — Spanien: Gryllidae Bolivar (^ ^) — Ungarn : Locustidae s. str. Vängel. Africa: Algier: Oedipodidae Saussure ; Ephippigeridae Bonnet & Finot — Marocco : Blattidae, Gryllidae Bolivar (') — Tunis: Tryxalidae Bolivür ('), Bonnet; Forficulidae, Blattidae, Mantidae, Phasmidae, Tryxalidae, Oedipodidae, Pyrgomorphidae, Pamphagidae, Acrididae, Tettigidae, Decticidae, Gryllidae, 53 sp. meist von G. und L. Doria gesammelt, mit Angabe von Literatur und Fund- orten Bormans (^) ; Forficulidae , Blattidae, Mantidae, Phasmidae, Tryxalidae, Oedipodidae, Pyrgomorphidae, Pamphagidae, Acrididae, Opomalidae, Tettigidae, Phaneropteridae, Locustidae, Decticidae, Ephippigeridae, Heterodidae, Gryllidae, 104 sp. mit Angaben über Literatur und Fundorte Bonnet & Finot. Äthiopische Region. Ost- Africa: Mantidae Waterhouse; Heterodidae Lucas (i) — Süd- Africa: Mantidae, Oedipodidae Trlmen (') ; Phasmidae Trimen (^j. Nach Bormans (^j wurden die von ihm ohne näheren Fundort aufgeführten Sp. [vergl. Bericht f. 1882 II p 159] an der Delagoa-Bay bei Lorenzo Marquez gesammelt. — Mada- gascar: Forficulidae Karsch ("-). Indische Region. Sumatra (Fort de Kock, Ile Bodjo, Pai'nan) : Blattidae, Mantidae, Phasmidae, Mastacidae, Acrididae, Tettigidae, Phaneropteridae, Mecopodidae, Conocepha- lidae, Locustidae, Gryllacridae , Stenopelmatidae, Gryllidae, 32 sp. ges. von Weyers Bormans (^). Australische Region. Australien: Forficulidae Karsch ('), Phasmidae Mc Coy (^ ^j. Nearctische Region. Atlantische Staaten: Gryllidae Bruner (') — Kansas: Orthoptera *Bruner [^) — Oregon: Gryllidae Bruner ('j — Washington Terr. : Tryxalidae, Oedipodi- 196 Arthropoda. dae , Acrididae . Lociistidae, Gryllidae, 52 sp. ges. von Hagen und Henshaw, längs der nördlichen Pacific-Babn Bruner [^} . Neotropische Region. Mexico : Acrididae Packard- 3. Systematik der Ordnung. Brauer erklärt die von Packard aufgestellten Oberordnungen, insbesondere die der Pbyloptera [vergl. Beriebt f. lSb3 II p 155] für unnatürlicb. Er trennt ferner die Forficulidae als eigene Ordnung Dennaptera von den Orthoptera genuiua s. str. und gibt ausfübrlicbe Cbaracteristiken der Dermaptera p 348, 353, und der Ortiioptera genuina s. str. "p 348, 358-362. Die letzteren tlieilt er, je nacbdem die Costa des Vorderflügels (oder aucb in beiden Flügeln) mar- ginal oder submarginal verläuft, in Ortboptera nomoneura (? Embidae, Blattidae, Mantidae) und in Ortboptera beteroneura (Pbasmidae, Salta- toria . Bolivar (^) beschreibt Blattidae 1 n., Tryxalidae 1 n., Epbippigeridae 2 n., Gryllidae 2 n. — Vergl. ferner Bonnet & Finot, Bormans ('~^], Bruner (2), Bucchich; Carlini, Reuter. 4. Systematik and Faunistik der Familien. Familie Forficulidae. Bucchich führt von Lesina und Curzola an Lahidura I, Anisolabis 3, Labia 1, Forßcula 1. Bormans (') verzeichnet von Tunis Lahidura 2, Anisolabis 1, Labia 1, Forßcula 1. Bonnet & Finot ebendaher ioÄtV/Mra 2, Anisolabis ?>, Labia \, Forßcula 1. — Vergl. aucb Brauer, Carlini. Echinosoma insulanum n. Madagascar centralis; Karsch {^) p 323. Pygidicrana Finschi n. Q Somerset; p 322, marmoricrura Dubr. (J' nee. Serv. = Finschi u. ; Karsch (^j. Familie Blattidae. Bucchich führt von Lesina und Curzola an Ectobia 3, Aphlebia 2, Loboptera 1, Periplaneta 1 ; Aphlebia subaptera Ramb. fand er häufig im Q Geschlecht, das (J^ ist auch ihm trotz aller ßemühungen unbekannt geblieben. Bormans (^) von Tunis Aphlebia 1, Loboptera 1, Heterogamia 1, Bonnot & Finot ebendaher Aphlebia 2, Phyllodromia 1, Loboptera 1, Periplaneta 2, Heterogamia 2. Bor- mans i}] von Sumatra Periplaneta 2, Ectobia 1, Phyllodromia 1. Aphlebia Cazurroi n. (j^ Riff (Melila) ; Bolivar (^) p 116. Familie Mantidae. Bucchich fand auf Lesina und Curzola Mantis 1, Ameles 2, Empusa 1. Bor- mans (^) verzeichnet von Tunis Hierodula 1, Mantis 1, Iris 1, Fischeria 1. Bonnet & Finot ebendaher Eremiaphila 1 , Hierodula 1 , Mantis 1 , Iris 1 , Fi- scheria 1 , Ameles 1 , Oxythespis 1 , Blepharis 1 , Empusa 1 , Idolomorpha 1 und beschreiben Discothera tunetana Finot Figg. Waterhouse führt vom weißen Nil 8. Hexapoda. VI. Orthoptera. B. Faunistik und Systematik. 197 und vom Kilima-njaro Idolmn diaboUcvm Sauss. au. Bormans l^) von Sumatra Hierodula 1, Pseudomantis 1, Tenodera 1. Vergl. auch Bell;, Brauer, TrJmen (V^)- Familie Phasmidae. Bucchich fand auf Lesina und Curzola Bacillus 1. Bormans (^) führt von Tunis an Bacillus 1. Bonnet & Flnot ebendaher Bacillus 2. BormanS (^) von Sumatra Ctenomorpha 1. Mc Coy (-) beschreibt und bildet ab Acrophjlla violascens Leach q^, Q., Podacanthus Typhon Gray Q- Vergl. auch Brauer, Trimen ("^) . Trojndoderus iodomus n. Q Dandenong' Range, Melbourne; p 33 Figg., rhodomus n. Q Inglewood, Victoria; p 35 Fig. Mc Coy (i). Familie Acrididae. Mastac idae. Bormans ('^) führt von Sumatra an Erucius 1. Tryxalidae. Bucchich verzeichnet von Lesina und Curzola Tryxalis 1, Stenobothrus 5, Stati- ronotus 1, Stethophyma 1, Epacroinia 1. BormanS (') von Tunis Tryxalis 2, Duronia 1 (n.), Stenobothrus 3, Stauronotus 1, Epacromia i und rectificirt die Beschreibung von Stenobothrus Lucasi Brisout (Fig.) ; Bonnet & Finot von Tunis Tryxalis 2 , Ochrilidia 1 , Stenoboth?'us 4 , Phloeoba 1 , Stauro7iotus 2 , Stethophyma 1 , Epacromia 2 und beschreiben das bisher unbekannte ^ vou Phloeoba Lucasi Bol. Bruner P) zählt auf Stenobothrus 4, Chloealtis 1. — Vergl. auch *Schlmke- witsch, 'Stepanoff. Duronia Laurae n. ^ Tunis; p 103 Fig. BormanS (•) — Laurae (n.)Borm. = Phloe- oba Lucasi Bol. ; Bonnet. Stenobothrus Boimeti n. Chott Fedjej (Tunisie) ; Bolivar (') p 116. Oedipodidae. Bucchich verzeichnet von Lesina und Curzola Oedijwda 2, Acrotylus 1 , Pachy- tylus 2. Bormans (^) von Tunis Sphingonotus 2, Acrotylus 1, Oedipoda 4, Pachy- tylus 2, Eremobia 1. Bonnot & Finot vou Tunis Sphingonotus 3, Acrotylus 3, Oedipoda 3, Bryodema 1, Pachytylus '1, Eremobia 3 und geben Beschreibungen von Acrotylus octofasciatus Serv. q^, Q, Bryodema capsitana Bonn, und Eremobia insignis Lucas. Nach Reuter wurde Oedipoda [Pachytylus] migratoria L. in Suo- nenjoki (62° 40' N.) in Finland aufgefunden. Bruner zählt vom Washington Terr. »Mi Aulocara 1, Dissosteira 1, Circotettix 2, Trimerotropis -^ (1 n.), Psinidia 2, Camnula I, Arphia l, Hippiscus 5. Vergl. auch *Stepanoff, TownSCnd, Trimen (•). ^M/omr« coen Je«)? e« Scudd. = {Stauronotus) ElUotti Thos.; Bruner (^) . Eremobia Clavelü hwc. gute Art, insignis Luc. (;;f beschrieben; Bonnet & Finot. Helioscirtus Finotianus n. (^ Oran (Algeria) ; SauSSUre p 28. Trimerotropis coeruleipennis n. Washington Terr., Montana, Idaho, Wyoming, Utah; Bruner (2) p lo. Pyrgomorphidae, Bormans (') uud Bonnet & Finot führen von Tunis an Pyrgomorpha l. 198 Arthropoda. Pamphag idae. BormanS (*) führt von Tunis an Pamphagus 1. Bonnet & Finot ebendaher Finotia 1, Ocnerocles 2, Pamphagus 4, Eunapms 2 und geben Beschreibung von Finotia spinicollis Bonn. (Figg.). Eunapius quadridentatus Bris, gute Art; Bonnet & Finot. Acrididae s. str. BuCChich fand auf Lesina nnd Curzola Acridium 1, Caloptenus 1, Platyphyma 1. BormanS (') verzeiclmet von Tunis Acridium 1, Caloptenus 1, Eujirepocnemis 2. Bonnet & Finot ebendaher Dericorys 1, Acridium 1, Schistocerca 1, Caloptenus 1, Euprepocnemis 2 und beschreiben Dericorys Millierei Finot (Figg.). Nach Reuter wurden langflügelige Exemplare ((J', § ) von Pezotettix pedestris im Kirchspiele Nilsia (Finlandj aufgefunden. Bormans [^) verzeichnet von Sumatra Oxya 1, Acridium 1, Catantops 1. Bruner (2) aus dem Washington Terr. Pezotettix 4 (2 n.\, Bradynotes 2 (1 n.), Melanoplus 10. — Vergl. auch Packardj PaSSerinI, Riley. Bradynotes montanus n. Colville, Loon Lake, Washington Terr., Helena, Montana; Bruner (2) p 16. Melanojjlus minor ^cwdiA. gute Art; Bruner (^) . Pezotettix hispidus n. Colville, Washington Terr. p 12, icashingtonius n. Loon Lake, Colville Valley, Wash. Terr. ; p M Bruner (2). Opomalidae. Bonnet & Finot führen von Tunis an Opomala l. Tettigidae. Bormans (^) führt von Tunis an Tettix 1, Bonnet & Finot ebendaher Tettix 2, Bormans ["^j von Sumatra Tettix 6. Familie Locustidae. Bruner {^) verzeichnet vom Washington Terr. 9 Arten, nur nach den Genera bestimmt. Callimenidae. Über Callimenus Pancici vergl. Brunner. Phaneropteridae. Bucchich fand auf Lesina und Curzola Barhitistes 1 , Poecilimon I , Leptophyes 1 , Acromctopa 1, Phaneroptera 1, Tylopsis 1. Bonnet & Finot in Tunis Odontura 1. Bormans {^j auf Sumatra Phaneroptera suhnotata Stal. Meconemidae. Bucchich fand auf Curzola Cyrtaspis 1 . Mecopodidae. Bormans ^) führt von Sumatra an Mecopoda 1 . 8. Hexapoda. VI. Orthoptera. B. Faunistik und Systematik. 199 Conocephalidae. Bormans (-) flllirt von Sumatra an Conocephahis 1 . Locustidae s. str. Bucchich fühlt von Lesina und Curzola an Locusta 1, Bonnet & Finot von Tunis Locusta 1, Bormans (-) von Sumatra Hexacentms 1. Vergl. auch Vängel. Dec ticidae. Bucchich führt von Lesina und L'urzola an Decticus 1, Rhacocleis 2, Anterastes 1, Jhamnotrizon^, Pachytrachelus 1, Plati/cleis l. BormanS (') von Tunis i?Äaco- cleis 1, Platycleis 3, Decticus 1. Boniiet it Finot ebendaher Rhacocleis l, Cteno- decticus 1, Platycleis 4, Decticus 2. Costa verbessert die Beschreibung von Ptero- lejns pedata A. Costa, die zu Pterolepis ßamb. Brunn, gehört. Nach Reuter wurde Decticus brachyptems Q mit verlängerten Flügeln im Kirchspiele Nilsia (Finland) aufgefunden. Platycleis umbilicata u. Q Genuargento ; Costa p 15. E p h i p p i g e r i d a e . Bucchich fand auf Lesina und Curzola Ephippigera l . Bonnet & Finot in Tunis Ephippigera 3 (In.) und beschreiben E. Oudryana Finot Figg. und my;'o- marginata Lucas. Vergl. auch Lucas ('^). Ephippigera Innocentii n. Mecheria (Oran), Süd-Tunis (Gabes, Gafsa, Nord des grands Chott etc.) ; p 56 Figg., nigromarginata Luc. gute Art; Bonnot & Finot — pellucida n. (J* Sierra de Gerez, Leonte (Portugal) p IIG, serrata u. Q Mil- foutes Ribeiro (Portugal) ; Bolivar (i) p 117. ^ Heterodidae. Bonnet & Finot führen von Tunis an Eugaster 1. Eugaster Bioyeti n. Koudoa (Afrique Orientale) ; Lucas (') p 91. Sagidae. Bucchich fand auf Curzola Saga 1 . Gryllacridae. Bormans (^) führt von Sumatra au Gryllacris 1. Stenopelmatidae. Bucchich fand auf Lesina und Curzola Troglophilus 1, Dolichopoda 1. Bor- mans (^) auf Sumatra Rhaphidophora 1 . Familie Gryllidae. Bucchich fand auf Lesina und Curzola Oecanthus 1, Gryllus 2, Mogisoplistus 2, Gryllomorphus 1, Arachnocephalus 1, Gryllotalpa 1. BormanS (•) verzeichnet von Tunis Trigonidium 1, Gryllus 4, Gryllodes 1, Platyblemmus 1, Gryllomorphus 1 , Myrmecophila 1 , Gryllotalpa 1 und characterisirt Myrrnecophila acervorum 20(\ Arthropoda. Panz. var. mauritanica Lucas. Bonnet & Finot ebendalier Trigonidium 1, Gryllus 8, Gryllodes \, Brachytrypes 1, Flatyblemmus 1, Gryllomorpha l, ISIyrrnecophtla 1, Mogisojdistus 1, Gryllotalpa 1. BormanS C-^) von Sumatra Gryllotalpa 1, Brachy- trypus 1, Gryllomorpha 1, Gryllus l, Gryllodes 1, Nisitrus 1 und Bruner C-^) vom WasLington Terr. Gryllus 4, Oecanthus 1. Briiner (•] characterisirt das Genus Myrmecophila in beiden Geschlechtern. Gryllodes littoreus n. Talavera de la Reina (Tajo) ; Bolivar (^j p 174. Gryllomorphus Fragosoi n. ^f Dos Hermanas (Seville) : Bolivar (^) p 117. Homaloblemmus Olcesei n. Tanger (Maroc) ; Bolivar [^) p 117. Myrmecophila Pergandei n. Atlantic States, from Maryland southward; p 12 Figg., oregonensis u. Q Portland, Oregon; p 43 Bruner (^). C. Paläontologie. 1. Pannen (Formationen). Silurfo rmation : Frankreich, mittleres Silur, Sandstein von Jurques (Cal- vados): Blattidae Brongniart {^^'■-)- K o h 1 e n f 0 r m a t i 0 n : Böhmen, Gaskohle von Lubn;i bei Rakonitz : Blattidae Kusta — Frankreich, Mines de Commentry (Allier] : Blattidae, Palaeacridiodea, Protophasmida, Sthenaropterida Brongniart (^) — Nord-America : Mazon Creek, Illinois: Blattidae Scudder (O- Triasformation: Nord-America: Fairplay, Colorado: Blattidae Scud- der (1, 2). Juraformation: England, oberer Lias von Alderton (Gloucestershire) : Blat- tidae Scudder .^j — England, Purbecks: Blattidae Scudder i'^) — Mecklenburg: Lias von Dobbertin : Blattidae, Saltatoria Geinitz ('~-^). 2. Systematik and Fannistik. Nach Brauer weichen die ältesten bekannten Blattiden, Mantiden und Phas- miden von den jetzt lebenden Formen nur der Gattung nach ab oder gehören selbst in jetzt lebende Genera. Brongniart i-^) gibt eine systematische Übersicht über die Insecteu aus den Primärformationen und insbesondere über die Funde in den Kohlenlagern von Commentry (Allier). Von Orthopteren werden Blattidae, Palaeacridiodea und Neurorthoptera besprochen. Geinitz (') beschreibt aus dem unteren Jura von Dobbertin: Mesoblattina 1 n., Blattina 2 n., Gomphocerites 1 n., Acridiites 1 n., Gryllus 1 n. — Geinitz (•^) verzeichnet ebendaher Mesoblattina 2 (I n.i, Blattina 6 (1 n.), Gomphocerites 1, Acridiites 1, Gryllus 1, Gryllacris 1 u. I. Orthoptera s. str. Familie Blattidae. Kusta gibt ein Verzeichnis aller bisher bekannt gewordenen fossilen Blattiden. Brongniart (', 2) beschreibt aus dem Silur von Jurques den Flügel einer Blattide [Falaeoblattina n.), der der älteste bisher gefundene Insectenrest ist. Goss refe- rirt über diesen Fund und hebt hervor, daß seit der Entdeckung von Landpflanzen im Silur auch das Vorkommen von Insecten daselbst wahrscheinlich gewesen sei; 8. Hexapoda. VI. Orthoptera. C. Paläontologie. 201 es repräscntii't dieser Flügel nicht allein das älteste bekannte Insect, sondern auch das älteste bekannte Landtlüer! Scudder (-) bespricht die für die meso- zoischen Blattidae bisher aufgestellten Genera, insbesondere Blattidium, Elisama, Rithma, Mesoblattina und stellt zu Rithna : R. purbeccensis Gieb. , Morrisi Gieb., ßlatima formosa Heer , liasina Gioh. ; zu Mesohlattlna : M. protypa Gein., angu- stoto Heer , dobbertinensis Gem. , Rithma Murckisoni Gieh. , mitiqua Gieb . , Blattet elongata Gieb. Kusta reproducirt die Abbildung von Etoblattina manebachensis Goldbg. Anthracoblattina {Blattina) lubnensis n. Oberflügel, Brandschiefer von Lubnä bei ßakonitz ; Kusta p 2 Fig. Blatta elongata Gieb. zu 3Iesoblattina, jjlunia Gieb. zu Pterinoblattitia ; Scudder (^). Blattina chrysea u. Oberflügel p 520 Fig., Langfeldti n. Oberflügel. Unterer Jura von Dobbertin; p 521 Fig., angustata Heer zu Mesoblattina Geinitz (^] — Ma- thildae n. Oberflügel p 29 Fig., nana n. Oberflügel. Lias von Dobbertin p 30 Fig. Geinitz [^) — incertan. Oberflügel. Lias von Dobbertin ; p 571 Fig. Gei- nitz ('^j — chrysea Gein. zu Pterinoblatfina, formosa Heer, liasina Gieb. zu Rithma] Scudder P). Megablattiwi n. Für Fidgorina Klieveri Goldbg. ; Brongniart (^) p 58. Mesoblattina u. zwischen Blattina (foss.) und Blatta free). Für Blattina angustata Heer; p 519 — protypa n. Oberflügel. Unterer Jura von Dobbertin; p 519 Fig. Geinitz (^) — dobbertinensis u. Oberflügel. Lias von Dobbertin; p 570 Fig. Gei- nitz (^^). Neorthroblattina n. p 108 — albolineata n. Oberflügel, LaJcesii n. Oberflügel, rotun- dataw. Oberflügel p 109, attenuata n. Oberflügel. Trias. Fairplay, Colorado; P 110 Scudder p). Ory etoblattina occidua n. Oberflügel. Kohlenformation. Mazon Creek, HL; Scud- der (1) p 37. Palaeoblattina n. verwandt mit Progo7wblattina und Gerablattina. Ausgezeichnet durch die Länge der Analvene und die geringe Breite des Axillarfeldes; (i) p 159, (2) p 1165 — Douvillei u. Oberflügel. Gres silurien moyen de Jurques (Calvados) ; (i) p 195, (2) p 1165 Brongniart (S 2) _ abgebildet Brongniart (»). Paromylacris n. p 35, rotundum n. Oberflügel, Pronotum , Hinterleib. Kohlen- formation. Mazon Creek, Hl. ; Scudder (^) p 35. Petrablattina aeqtia n. 0\)Q\'M^q\, Meieri m. Oberflügel. Trias. Fairplay, Colorado; Scudder (•) p 38. Poroblattina n. verwandt m\i Petrablattina p 38, arcnata n. Oberflügel, Lahesii n. Oberflügel. Trias. Fairplay, Colorado; Scudder (^) p 39. Promylacris n. p 34, ovalen. Oberflügel, Pronotum. Kohlenformation. Mazon Creek, Hl.; Scudder (i) p 34. Pterinoblattina n. für Blatta pluma Gieb. , Blattina chrysea Geinitz', Ricania hospes Germ., gigas Weyenb. p 105, penna n. Oberflügelfragment. English Purbecks p 106, intermixta n. Oberflügel. Oberer Lias. Alderton, Gloucestershire, Eng- land; p 107 Scudder (2). Ricania hospes Germ., gigas Weyenb. zu Pterinoblattina \ Scudder (^). Rithna Micrchisoni G'iQh . , antiqua Gieb. zu Mesoblattina; Scuddor (^). Scidinoblattina n. p 110, Brongniarti \\. Oberflügel, p 110, intermedia w. Oberflügel, rectan. Oberflügel. Trias. Fairplay, Colorado; p 111 Scudder (2). Spiloblattina n. verwandt mit Etoblattina p 36, Gardineri n. Oberflügel, triassica n. Oberflügel, guttata n. Oberflügel p 36, marginata n. Oberflügel. Trias. Fair- play, Colorado; p 37 Scudder (*). 202 Arthropoda. Familie Mantidae, Eugereon Böckingi Dolirn und Lithomantis carhonaria Woodward gehören nach Brauer aller Wahrscheinlichkeit nach zu den Mantiden, desgleichen manche Dicty- oneura und 7e?'mes- Arten, so Dictyoneunt elegans Goldbg., elongata, Tennes laxus, T. Decheni u. A., deren Flügel eine deutliche marginale dicke Costa haben. Familie Phasmidae. Nach Brauer sind manche Bietyoneura- und 7e?-mesarten Phasmiden. Er be- spricht ausführlich die Flügelbildung von Frotophasma Brongn., die vollständig mit der recenter Phasmiden übereinstimmt. Familien Acrididae, Locustidae, Gryllidae. (Orthoptera saltatoria.) Brongniart ^) gibt eine Übersicht über die heuschreckenartigen Insecten der Kohlentbrmatiou, für die er die Familienbezeichnung Palaeacridiodea n. wählt, sie bilden nach ihm den Stamm unserer Orthoptera saltatoria. Er unter- scheidet 6 Genera: Oedischia n. , Sthenaropoda n. , Protogryllacris n. , Paolia Scudd., Sthenarocera n., Caloneura n. Acridiites sp. (innom.) Unterfingelfragment. Unterer Jura von Dobbertin ; Geinitz (^) p 522 Fig. — formosus Goldbg., carbonatus Goldbg. zu Megathentomum Goldbg., priscus Andr. zu Spilaptera u. ; Brongniart (■^). Caloneura n. Sthenarocera n. nahestehend, unterscheidet sich durch dünnere Füße und Antennen, kürzere und weniger schmale Flügel, deren Nerven von gefärbten Bändern eingefaßt sind p 59, Daivsoniin. (indescr.) Fig. Kohlenformation, Com- mentry (AUier) ; Brongniart (*). Gomphocerites Bernstorfß n. Oberflügel. Unterer Jura von Dobbertin ; Geinitz (^) p 522 Fig. Gryllacris Schlieffenin. Oberflügel, Fragment des Unterflügels. Lias von Dobbertin ; Geinitz (^) p 580 Fig. Gryllus dobbertinensis n. Oberflügel. Unterer Jura von Dobbertin ; Geinitz (') p 523 Fig. Oedischia n. mit ausgebildeten Springbeinen p 58, Williamsonii n. (indescr.) Fig. Kohlenformation, Commentry ; Brongniart (•''). Protogryllacris n. für Lithosialis Bronguiarti ficndd.; Brongniart ("^) p 59. Sthenarocera n. Antennen kräftig und lang , Körper kurz und stämmig, Füße lang, Flügel lang und schmal, denen von Pachytylus ähnlich p 59 , pachytyloides n. (indescr.) Figg.; Brongniart /^). Sthenaropoda n. Oedischia n. nahestehend, die Füße sind jedoch kürzer und zum Springen wenig geeignet p 59, Fischerin. (indescr.) Fig., Filholi n. (indescr.) Fig. Kohlenformation, Commentry; Brongniart (^). II. Neurorthoptera. Brongniart {^) theilt die von ihm als eigene Ordnung aufgestellten Nenrorthoptera [vergl. Bericht f. 1884 II p 186] in die beiden Unterordnungen: Nenror- thoptera s. str. und Palaeodictyoptera. Erstere enthält die Familien: Protophasmida [Frotophasma Brongn. , Lithophasma n. , Titanophasma Brongn., 8. Hexapoda. VII. Thysanoptera. A. Biologie. B. Faunistik und Systematik. 203 Archegogryllus Scudd.) und Stlieiiaropterida n. [Meganeura u., Megathen- iomum Goldbg., über letztere s. oben p 181). 1 . N e u r 0 r t h 0 p t e r a s. str. Große Insecten , die Älmliclikeit mit den Phasmideu der Jetztzeit haben , sich jedoch durch das Flügelgeäder unterscheiden ; Brongnlart (•') p 59 u. 60. Vergl. hierzu auch Brauer. Familie Protophasmida. Lithophasma n. für Gryllacris [Lithosialis] lithantraca Goldbg.; Brongniart ('^j p 50. Protojihasma Gmulryi n. (indescr.) Kohlenformation, Commentry; Brongniart (3) Fig. Familie Sthenaropterida n. Für Meganeura n. und Megathentomiom (jo\^])^. aufgestellt; Brongniart (3) p 60. Meganeura n. für Dictgoneura Monyi Brongn. , Archaeoptilus ingem Scudd. , Lucasi Brongn.; Brongniart (*) p 60. VII. Thysanoptera. (Referent: Dr. Herrn. Krauß in Tübingen.) Über Anatomie etc. vergl. die lleferate auf p 147, über allgemeine Insectenkunde am Schlüsse der Abtheilung. Brauer, Friedrich, Systematisch-zoologische Studien, in: Sitz. Ber. Akad. Wien 91. Bd. p 237—413 1 Taf. [203] Costa, Achille, Notizie ed Osservazioni sulla Geo-Fauna Sarda. IV. in: Atti Accad. Na- poli (2) Vol. 1 31 pgg. Tisanotteri p 12. [201] Osborn, Herb., Notes on Thripidae, with descriptions of new species. in: Canad. EntomoL Voh 15 1883 p 151— 15ö. [203, 201] A. Biologie. Osborn schließt aus der Bildung der Mundtheile, daß die Nahrung der Thripi- den vegetabilisch und nicht animalisch sei. B. Faunistik und Systematik. 1. Pannen. Paläarctische Region. Europa: Sardinien: Tubulifera Costa. Nearctische Region. Tubulifera, Terebrantia Osborn. 2. Systematik der Ordnung. Brauer gibt eine ausführliche Characteristik der Ordnung p 364-365. 204 Arthi-opoda. Osborn beschreibt aus Nord- America (Jowa) Tubulifera (l n.1 , Terebrantia 3 (2n.). 3. Systematik and FaaDistik der Familien. Familie Tubulifera. Phloeothrips bigenimata Costa indescr. [vergl. Bericht f. 1883 II p 161] = albo- signata Reuter.; Costa — nigra n. Arnes, Jowa, auf Blüthen des rothen Klees; Osborn p 154. Familie Terebrantia. Thrips tritici Fitch beschrieben ; Osborn. Chirothrips antennata n. Manchester, Jowa, auf Blüthen des Lieschgrases ; Osborn p 154. Thrips striata n. Q Arnes, Jowa; Osborn p 155. VIII. Coleoptera. (Referent: Ludwig Ganglbauer in Wien.) Über Anatomie etc. vergl. die Referate auf p 147, über allgemeine Insectenkunde am Schlüsse der Abtheilung. Anonymus, 1. Züchtungsversuche von Apionidae malvaephagae . in: Corr. Bl. Int. Ver. Lep. Col. Samml. 1. Jahrg. p 42—43. [226, 227, 296] - — -, 2. Einiges über Fallenfang von Käfern, in : Insectenwelt 2. Jahrg. p 64. [225] Abeille de Perrin, Elzear , 1. Nouveaux documents pour servir ä l'histoire des Malachides. in; Revue Ent. Caen Tome 4 p 4—28. [227-232, 285, 286] , 2. [Note synonymique] . in: Ann. Soc. Ent. France (6) Tome .5 Bull, p 39. [296] , 3. [Collops ahrinoides n.]. ibid. p 116. [286] , 4. Catalogus Malachiidarum Europae et circa, in : D. Ent. Zeit. Berlin 29. Jahrg. p 257—263. [227, 285] , 5. [Mallosia imperatrix n.]. in: Ann. Soc. Ent. France (6) Tome 5 Bull, p 140. [230, 321] — , 6. Malachides nouveaux. in: Revue Ent. Caen Tome 4 p 139— 153. [227—232, 285, 286] , 7. Cüleopteres rares ou nouveaux de France, ibid. p 153 — 161. [226, 228, 229, 237, 239, 243, 262, 276, 277, 294-296] Albers, G., 1. Über Gnaphalorijx aper Oestro und curttis Kirsch, in: D. Ent. Zeit. Berlin 29. Jahrg. p 232. [270] , 2. Zur Berichtigung, ibid. p 248. [270] Allard, Ernest, 1. Coleoptera nova. in: Wien. Ent. Zeit. 4. Jahrg. p ISO. 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Coleoptera och Hem. ins. af Vega Exped. Medlemmar a Berings Sund Amerikanska Kust, uti omgifningarna af Port Clarence vid Grantley-Harbour och Sjön Iman-Ruk den 23.-26. Juli 1879. ibid. p 45-57. [231, 234, 239, 240, 243, 247, 254, 269, 329] 222 Arthropoda. Sahlberg, John, 3. Coleoptera och Hern. ins. af Vega Exped. Medlemmar pa Bering-Ön den 15 —18. August 1879. ibid. p 61— 71. [231,239,247,258,299] * , 4. Om sculptur-dimorphismen hos Dytiscidernes honor. in : Förh. Skand. Naturf. 12. Mödte Stockholm 1880 1883 p 533—538. [225, 245] Saini-Andre, Henry de, Callicnemis Latreillei. in: Feuille Jeun. Natural. 16. Annee p 23. [228, 274] Salle, A., Flatypsißlus. in: Ann. Soc. Ent. France (6) Tome 4 1884 Bull, p 145. [234,258] Sang, J., Luciola iialica at Darlington. in: Ent. Month. Mag. Vol. 22 p 138. [227, 281] Schaufuss, L. VV., Beitrag zur Fauna der niederländischen Besitzungen auf den Sunda-lnseln. in : Hör. Soc. Ent. Ross. Tome 19 p 183—209. 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Von den 17 neuen Arten ist nur Rhagonycha latiuscula über das arctische Sibirien verbreitet, der neue Crypto- phagus und die neue Cryptohypnus^\i finden sich auch an der nordamericani- schen Küste am Berings Sund. Von den übrigen 21 Sp. sind 2 bis russisch Lappland, 16 über das arctische Sibirien, 3 über Kamtschatka, 5 über die nord- americanische Küste am Berings Sund, 3 über Südost-Sibirien, 3 über die nord- ameri^anische Westküste bis Sitka, 2 über größere Theile von Nord-America verbreitet. Nicht eine einzige der 37 Arten findet sich auf der skandinavischen Halbinsel. Curculionidae Faust C). Berings Insel. Sahlberg (•^) verzeichnet Carabidae 2, Staphylinidae 4, Sil- phidae 2, 1 n., Curculionidae 1. Mongolei: Carabidae Gehin, Galerucini Weise ('). Japan: Staphylinidae Sahlberg C^), Histeridae Lewis ('/^), Schmidt (^j, Niti- dulidae Reitter {^], Colydiidae Sharp (^), Lathridiidae Belon (^), Monotomidae Reitter [^), Cetonini Jansen, Elaterini Candeze (^), Eupoda, Camptosomata, Eu- molpini, Chrysomelini Jacoby (^), Cassidini, Hispini Gorham C^), Coccinellidae Weise {'). 3. Äthiopische Region. W^est-Africa. Cetonini Janson, Tenebrionidae Schaufuss, Fairmaire (^^), Curculionidae Aurivillius, Eumolpini Lefevre (^), Languriidae Fowler {■^). Cap Verde. Staphylinidae Eppelsheim (■'). Senegal. Cucujidae Grouvelle ('). Goldküste, Ashanti. Staphylinidae Eppelsheim (■^), Histeridae Lewis P), Curculionidae Faust (*). Angola, Congo: Cicindelidae Kolbe ('*), Cetonini Kraatz f^^)^ Cleridae 6. Quedenfeldt (2), Tenebrionidae Allard [K '% G. Quedenfeldt ('), Cistelidae 6. Quedenfeldt ('), Anthicidae 6. Quedenfeldt (^), Curculionidae Faust (^), Cocci- nellidae Weise (^). Gondokoro. Tenebrionidae Kolbe {^). Damara. Curculionidae Aurivillius, Faust (^). Süd-Africa. Scarabaeidae laparosticti Lansberge (^j , Cetonini Janson, Curculionidae Aurivillius, Eumolpini Lefevre (^). Capland. Cetonini Waterhouse [^). Curculionidae Aurivillius. Caffraria. Cetonini WaterhOUSe [^], Tenebrionidae SchaufuSS, Curculio- nidae Aurivillius, Brenthidae Kolbe (^). Transvaal. Curculionidae Faust f^), Aurivillius. Delagoa Bay. Chrysomelini Jacoby [^) . W Gami. Tenebrionidae Allard (^ 3) Curculionidae Faust f^l, Aurivillius. •232 Arthropoda. Central-Africa. Camptosomata Dohrn {^). Ost-Africa. Carabidae Fairmaire (^^), Cetoniui Gestro(3), Janson, Cleridae, Tenebrionidae, Cerambycidae Fairmaire (^^), Eumolpiai Lefevre (^). Zambese. Silpbidae, Buprestidae, Cerambycidae Dohrn (•^). Mozambique. Carabidae Gehin. Nyassa-See. Curculionidae Faust (^), Galerucini Duvivier (^). Zanzibar: Histeridae Lewis [\ ^), Schmidt (^), Brenthidae Kolbe (^) , Ga- lerucini Duvivier (^), EndomycMdae Gorham (i). Massai-Land. Scarabaeidae laparosticti Waterhouse (2). Waterhouse (^j bat die von Johnston auf dem Kilimanjaro gesammelten Coleopteren bearbeitet, unter den 56 aufgefundenen Arten: Scarabaeidae laparosticti 2, Cetonini 1, Buprestidae 2, Tenebrionidae 1 neu. Niams-Niams. Cetonini Janson, Eumolpini Fairmaire (^", ^^). Somali-Land. Histeridae Lewis {^], Curculionidae Faust [^). Abyssinien. Stapbylinidae Eppelsheim {^j, Histeridae Lewis (^ -], Cucu- jidae Grouvelle('), Lampyrini Olivier C^J, Tenebrionidae Marseul [^), Allard P, ^), Eumolpini Lefevre (*) . Ägypten. Histeridae Lewis {'), Melyrini Abeille ("), Tenebrionidae Senac(^). Arabien. Lathridiidae Belon p), Tenebrionidae Allard (^j. Madagascar. Carabidae Fairmaire {^\ Histeridae Lewis ('), Nitidulidae, Scarabaeidae laparosticti Fairmaire i^), Cetonini Janson, Elaterini, Lycini, Lam- pyrini, Cupesidae, Tenebrionidae, Curculionidae Fairmaire {^), Camptosomata Jacoby(3),i Eumolpini Lefevre (^), Galerucini Duvivier ('), Fairmaire {'), Hispini, Endomychidae Fairmaire (^). Mauritius. Cerambycidae Lameere p). Marion Island. Curculionidae Waterhouse (3) . 4. Indische Region. Ceylon. Pselapbidae Reitter C^'), Histeridae Lewis (S^: , Colydiidae Sharp {^), Lampyrini Olivier {'') , Curculionidae Chevrolat, Cerambycidae Pascoe {'^), Eumol- pini Lefevre (*), Galerucini Duvivier ('). Olliff (^j deutet eine Anzahl von Walker beschriebener Clavicornier von Ceylon aus den Familien Nitidulidae, Trogositidae, Cucujidae, Coccinellidae. Vorder-Indien. Histeridae Lewis (', ^), Lycini Bourgeois (^), Tenebrio- nidae Allard fp, •^), Schaufuss, Curculionidae Chevrolat, Eumolpini Lefevre (*>). Himalaya. Lycini Bourgeois (^). Thibet. Melyrini Abeille (') . China. Histeridae LewIS (-), Lucanidae Leuthner, Curculionidae Chevrolat, Eupoda Fairmaire C^), Eumolpini Lefevre (S ^), Galerucini Duvivier (^), Cocci- nellidae Weise (')■ Hinter-Indien. Histeridae Lewis (', ^1 ^ Trogositidae Leveille, Scarabaeidae laparosticti Lansberge (S '^), Dynastini Schaufuss, Cetonini Dohrn ('^), Rhipice- ridae Fairmaire ('-], Lycini Bourgeois ('), Lampyrini Olivier ('*), Bostrychidae Gorham (^), Curculionidae Chevrolat, Eumolpini Lefevre (S *) , Galerucini Duvi- vier (1), Coccinellidae Weise (^). Andamanen. Histeridae Lewis (*), Nitidulidae Ritsema (■'), Colydiidae Sharp (^), Cetonini Kraatz (^j, Cerambycidae Pascoe pj, Galerucini Duvivier (^j. Insel Bodjo. Galerucini Duvivier p). Nias. Cetonini Kraatz [^), Galerucini Duvivier (^j. Sumatra. Haliplidae Regimbart, Cucujidae Grouvelle P), Lucanidae Leuth- ner, Ritsema (loj, Scarabaeidae laparosticti Lansberge (S ^j, Cetonini Kraatz f^'), 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera, B. Faunistik. 233 Ritsema [^^], Elaterini Candeze (S ^), Rhipiceridae Fairmaire {^''), Lampyrini Olivier C*), Telephorini, Lymexylonidae Fairmaire (^*^), Bostrychidae Gorham (*), Tenebrionidae, Meloidae Fairmaire (^^), Curciüionidae Pascoe (^j, Cerambycidae Pascoe (2), Ritsema {^^], Schaufuss, Eumolpini Jacoby ('), Lefevre (^ % Ga- lerucini Jacoby ('), Duvivier {-), Hispini Oestro {^j, Erotylidae Gorham (^), Endo- mycliidae Gorham {^), Coccinellidae Duvivier(3). Java. Histeridae Lewis (S '^), Cucujidae Grouvelie (^), Scarabaeidae lapa- rosticti Lansberge {^), TeDebrionidae Schaufuss, Cuiculionidae Chevrolat, Pascoe (1), Cerambycidae Ritsema (^'-), Eumolpini Lefevre {^], Galerucini Jacoby (^), Duvivier (^), Hispini Gestro (^j, Endomychidae Gorham (^). Borneo. Histeridae Lewis ('), Colydiidae Pascoe (3), Elaterini Candeze (^j, Rhipiceridae Fairmaire (^'^), Lampyrini Olivier [^), Telephorini, Lymexylonidae Fairmaire (**^), Bostrychidae Gorham (^), Tenebrionidae, Meloidae Fairmaire (lö), Curciüionidae Pascoe ('), Cerambycidae Pascoe P), Galerucini Jacoby (•), Hispini Gestro ('-), Erotylidae, Endomychidae Gorham (^). Philippinen. Pselaphidae Reitter (^^l, Lucauidae Leuthner, Lampyrini Olivier ("), Tenebrionidae Schaufuss, Curculionidae Chevrolat, Eumolpini Lefevre (6, 8) ^ Chrysomeliui Duvivier (^), Galerucini, Hispini Duvivier {^), Languriidae Fowler {^). 5. Australische Region. Celebes. Carabidae Schaufuss, Silphidae Grouvelle (*), Lucanidae Leuthner, Schaufuss, Passalidae Schaufuss, Scarabaeidae laparosticti Lansberge ('}, Schau- fuss, Melolonthini, Dynastiui Schaufuss, Cetonini Kraatz [^'j, Schaufuss , Bu- prestidae Schaufuss, Lampyrini Olivier (•^j, Tenebrionidae Schaufuss, Curculioni- dae Chevrolat, Pascoe ('),Schaufuss,Brenthidae Schaufuss, Cerambycidae Lans- berge {^], Schaufuss, Eumolpini Jacoby {^], Schaufuss, Galerucini Jacoby {^), Schaufuss, Hispini Gestro (-), Erotylidae Schaufuss, Coccinellidae Weise {^j, Schaufuss. Schaufuss hat die von Hoek im Gebiete von Macassar gesammelten Coleopteren ca. 100 Spec. bearbeitet. Kleine austromalayisch e Inseln. Histeridae Lewis (', ^), Scarabaei- dae laparosticti Lansberge (^j, Dynastini Schaufuss, Cetonini Kraatz (*, &), Bu- prestidae Kirsch (^), Waterhouse (^j, Neervoort van de Poll, Lyciui Bourgeois (^j, Lampyrini Olivier (•^j, Curculionidae Pascoe (^j, Chevrolat, Waterhouse [^), Ce- rambycidae Pascoe (^), Ritsema {^), Chrysomelini Jacoby (i), Galerucini Jacoby (1), Duvivier (^). Neu-Guin ea. Histeridae Lewis ('), Scarabaeidae laparosticti Lansberge (^), Lampyrini Olivier (^j, Curculionidae Pascoe (^j, Eumolpini Jacoby ('), Chrysome- lini Jacoby (', 3), Galerucini Jacoby [^], Endomychidae Gorham (*). CapYork. Scarabaeidae laparosticti Lansberge (^), Lampyrini Olivier (^j, Eumolpini, Chrysomelini, Galerucini Jacoby [^]. Neu-HoUand. Carabidae Gehin, Histeridae Lewis ('), Cucujidae Grouvelle (1), Olliff (^), Lucanidae Macleay [\ ^-), Cetonini Kraatz (3), Olliff («), Brenthidae Schaufuss, Eupoda Waterhouse {^j, Eumolpini Lefevre (^), Chrysomelini Jacoby (3), Galerucini Duvivier (^), Coccinellidae Weise {^]. Tasmanien. Cucujidae Olliff {*], Eumolpini Lefevre (^). Neu-Seeland. BrOUn ('-) beschreibt Scydmaenidae 5, Colydiidae 3, Parnidae 2, Lucanidae 1, Melolonthini 1, Tenebrionidae 2, Anthicidae 1, Curculionidae 13. Vergl. ferner: Staphylinidae Fauvel ("), Pselaphidae Reitter (^^j, Lucanidae Broun (i), Sharp (^o). Neu-Britannien. Cetonini Kraatz (^), Curculionidae Fairmaire (''). Hawaii-Inseln. Blackburn & Sharp {^^] haben die Coleopterenfauna der 234 Arthropoda. Hawaii-Inseln (Hawaii, Maui, Lanai, Oabu und Kanai) bearbeitet. Die Insel- gruppe besitzt: Carabidae 61, Dytiscidae 3, in., Hydrophilidae 4, Staphylinidae 55, 14 n., Tricliopterygidae 3, Corylophidae 5 n., Histeridae 12, 7 n., Nitiduli- dae 44, 13 n., Monotomidae 1, Trogositidae 1, Colydiidae 2, 1 n.,Rhysodidae 1, Cucujidae 12, 5 n., Cryptophagidae 2, 1 n., Lathridiidae 1, Mycetophagidae 4, Dermestidae 9, 6 n., Lucanidae 1, Scarabaeidae laparosticti 5, Buprestidae 1, Elaterini 14, 7 n., Eucnemini 5 n., Telephorini 2 n., Cleridae 3, Anobiini 23, 6 n., Bostrychidae 5, 1 n., Cissidae 20, 12 n., Tenebrionidae 8, 1 n., Cistelidae 2, 1 n., Antbicidae 1, 1 n., Oedemeridae 1 n., Aglycideridae 30, 11 n., Curculi- onidae 49, 1 n., Scolytidae 10, 7 n., Anthribidae 2, 1 n., Cerambycidae 29, 2 n., Erotylidae 2 n., Coccinellidae 5, 3 n. Nach dem faunistischen Resume sind von den 150 gen. mit 428 sp. 99 gen. mit 352 sp. endogen. Höchst merkwürdig ist das gänzliche Fehlen derChrysomeliden. Sharp unterscheidet 3 Faunenelemente : 1. in jüngerer Zeit durch Cultur verschleppte Arten, 2. vor längerer Zeit einge- führte und acclimatisirte, specifisch veränderte Arten, 3. autochthone Elemente. Als autochthon betrachtet der Verf. 214, als zufällig eingeschleppt 56 Spec. Be- züglich der weiteren Details ist auf die erschöpfende Arbeit selbst zu verweisen. Biackburn berichtet in einem Appendix p 197 — 208 über seinen fast 6 jährigen Aufenthalt auf diesen Inseln und schildert im Allgemeinen den faunistischen Cha- racter derselben. 6. Nearctische Region. *Henshaw (^) liefert einen neuen Catalog der nordamericanischen Käfer und verzeichnet in demselben 9238 Spec. Arctisches Nord-America. Sahlberg (^j verzeichnet aus den Sammeler- gebnissen der Vega-Expedition von der Küste am Berings-Sund: Carabidae 9, 5 n., Staphylinidae 2, Byrrhidae 1, Cryptophagidae 1, Elateridae 1, Curculioni- dae 1, Chrysomelini 1 n. Von den 16 Arten sind 6 dem Gebiet am Berings-Sund eigenthümlich, 9 sind über das arctische Sibirien, 4 auch über das nördliche Eu- ropa, davon 2 auch über Mittel-Europa verbreitet. 2 Arten sind mit anderen Theilen von Nord-America, 2 mit Kamtschatka, 2 mit dem südöstlichen Sibirien gemeinsam. Vereinigte Staaten. Carabidae Leconte ('), Horn (ß), Bates, Gehin, An- thony, Hydrophilidae Horn (•'), Bowditch, Staphylinidae Leconte (^j, Horn \^^), Casey (^), Sharp (2), Lynch-Arribälzaga, Bell (\i,Blanchard (-j, Scydmaenidae, Sil- phidae Horn (^j, Platypsyllidae Salle, Trichopterygidae Casey ('), Histeridae Horn (6), Lucanidae Blanchard (^j, Casey ('), Scarabaeidae laparosticti Horn (^), Blan- chard (^j, Melolonthini Horn (^), Blanchard (^j , Ricksecker, Rutelini Horn (5), Dynastini Horn (^), Bell (^j, 6. Dimmock, Hagen, Harrington (^j, Henshaw (1), Cetonini Horn (^), Blanchard ('), Buprestidae Horn (^j, Townsend (^j, Elaterini Leconte ('], Horn (^j, Throscidae Horn (^j, Dascillidae Casey ('), Lycini Horn f]y Lampyrini, Telephorini, Cleridae Leconte (i), Horn (^, Anobiini Leconte (^), Casey (^), Bostrychidae Horn (^^ Tenebrionidae Horn (f*), Hamilton (-^j, Melan- dryidae Leconte (^), Meloidae Horn (^), Hamilton p), Curculionidae Leconte l^), Horn (6), Hamilton (^), Bowdifch, Bedel ('), Desbrochers, Anthribidae Leconte (1), Bruchidae Horn (^j, Sharp (^), Cerambycidae Leconte (^j, Horn (^ ^^), Leng (^), Hamilton (2, 3), Eupoda Leconte (^j, Lugger, Camptosomata Leconte (^), Eu- molpini Leconte ('), HornC'), Lefevre [*), chrysomelini Angell, Moffat, Galeru- cini Leconte (^), Hispini Smith (^j, Erotylidae Horn (*'), Coccinellidae Weise \}, 1'^). — Horn (1^) verzeichnet sämmtliche von Newman & Palisot de Beauvois aus den Vereinigten Staaten beschriebenen Arten und gibt deren Synonymie an. Henshaw (2) gibt die Synonymie der von Ziegler 1844 und 1845 beschriebenen 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. B. Faunistik. 235 36 nordamericauischen Arten. — Sammelbericlite : *Leconte (^j Lake superior, Ricksecker i^) Californien, Townsend (', =^), ^Shufeldt Louisiana, Rautenberg Ci- cindelidae und Carabidae von Wisconsin, "Dury Cincinnati, *Stejneger Comman- der Isl., Clarkson (*) Fire Isl., Rockoway Beach, Long Beach und Coney Isl.; ferner *Harrington (^j, Hamilton [^), Fletcher, Tyrell, Caulfield (^), Evans. 7. Neotropische Region. Central-America. Carabidae Gehin, Staphylinidae Sharp ("-), Corylophi- dae Matthews (2), Histeridae Lewis (',2), Cetonini Jansen, Rutelini Dohrn (3), Buprestidae Dohrn {^] , Lampyrini, Telephorini Gorham (^j, Bostrychidae Sharp (11), Tenebrionidae Champion, Curculionidae Chevrolat, Bruchidae Sharp {^), Cerambycidae Bates, Duges (^), Eumolpini Lefevre (^), Clirysomelini Duvivier(4), Galerucini Jacoby (-), Hispini Baly. Westiudien. Tenebrionidae Champion, Cerambycidae Lameere (2),Eupoda Weise (^^), Camptosomata Weise ('^j, Tappes, Eumolpini, Chrysomelini, Galeru- cini, Hispini, Cassidini Weise (^'-^j. — Weise ('-) hat die von Krug auf Portorico gesammelten Chrysomeliden (50) und Coccinelliden (10) bearbeitet. Columbia, Venezuela, Ecuador, Amazonas. Carabidae Gehin, Sta- phylinidae Sharp (2), Corylophidae Matthews (^j, Trogositidae Kirsch ('-), Passa- lidae, Scarabaeidae laparosticti. Melolonthini, Rutelini, Dynastini Kirsch ('^), Ce- tonini Ritsema (lo), Eucnemini Dohrn [^], Lycini Bourgeois (i), Lampyrini Oii- vier (^) , Tenebrionidae Champion, Curculionidae Chevrolat, Cerambycidae Bates, Lameere (2), Camptosomata Lefevre (i), Eumolpini Lefevre (*), Galerucini Dohrn (^) , Hispini Duvivier ('), Dohrn (■^), Endomychidae Dohrn {^], Coccinellidae Weise (V Brasilien. Carabidae Sharp ('), Staphylinidae Sharp (2), Lynch-Arribälzaga, Pselaphidae Reitter (^i), Silphidae Sharp C), Histeridae Lewis (', 2), Lathridiidae Belon (1), Rutelini Sharp (^), Dynastini Kirsch (2), Lampyrini Olivier (^ "), Tene- brionidae Champion, Curculionidae Chevrolat, Roeiofs, Cerambycidae Bates, Eu- molpini Duvivier (i), Lefevre (*), Galemcini Duvivier (^). Argentinische Republik. Carabidae Burmeister, Hydrophilidae Berg {^), Staphylinidae Lynch-Arribälzaga, Histeridae Lewis (^), Parnidae Berg {^), Bu- prestidae Berg (2, ^), Lycini Berg {^), Lampyrini Olivier (3, 6, ■'), Berg {^), Te- lephorini Berg {^), Cerambycidae Lameere {^), Berg (2,, Eumolpini Lefevre (S ^). Bolivia, Peru. Melolonthini, Rutelini Kirsch (2)^ Lampyrini Olivier [^), Cur- culionidae Chevrolat, Cerambycidae Bates, Eumolpini Lefevre (®). Chili. Carabidae Kraatz-Koschlau (^), Kraatz (^^ 22) Gehin, Pselaphidae Reitter (i^), Tenebrionidae Fairmaire ('2), Curculionidae Chevrolat, Bruchidae Karsch (2), Eumolpini Lefevre (*). Feuerland. Fairmaire {'^) gibt eine Übersicht der bis jetzt von den Feuer- lands- und Falklands-Inseln und von Süd-Georgien bekannten Arten und ver- zeichnet Carabidae 23, 5 n., Dytiscidae 2, Staphylinidae 2, In., Silphidae 1, Byrrhidae 2, 1 n., Lucanidae 1, Melolonthini 2, Elaterini 2n., Dascillidae In., Lampyrini 1, Telephorini 1 n., Tenebrionidae 14, 4 n., Curculionidae 8, 3 n., Cerambycidae 3, 1 n., Coccinellidae l. Bemerkenswerth ist die Übereinstimmung der Fauna der Feuerlands-Inseln mit jener der Falklands-Inseln und selbst von Süd-Georgien, während die in Patagonien so häufigen Gattungen Praocis, Pseudo- meloe und Nyctelia gänzlich fehlen. Süd-Georgien. Müller (') beschreibt 3 von Dr. Clauß in der Royal Bay gesammelte Arten : Dytiscidae 1 , Tenebrionidae 2 . Bisher ist nichts weiter von der Coleopteren-Fauna Süd-Georgiens bekannt. 236 Arthropoda. 8. Durch Cultur verschleppte Arten. Cucujidae Olliff (^), Curculionidae Roelofs, Bedel {\^], Buysson {^), Bnicliidae Gozis (1], Fairmaire {^). C. Biologie etc., Faunistik und Systematik der Familien. Familie Cicindelidae. Kolbe (^) beschreibt die Larve einer Manticnra. Beliier (^i bespricht das Vor- kommen und die Lebensweise von Cicmdela germanica L., Dohrn (^) von Platyclnle 2)allida F. Events (^) nnd Weyers besprechen neuerdings Cicmdela maritima. Halbherr verzeichnet 5 Cicindela vom Lagarinathal. Beuthin (') erwähnt Cic. hyhrida var. sylvicola Curt. aus Nord-Deutschland, sylvicola var. moniana Sharp aus der Schweiz, Kraatz ['^^] p 244 C. hyhrida var. Sahlhergi Fisch. aus dem südl. Ungarn, Reitter (3) C. asiatica Br. aus dem Talysch-Gebirge. Dokhtouroff revidirt die aralo-caspischenCicindeliden: Tetrarcha 1, Cicindela 29. Besprochen oder beschrieben werden außer den neuen Arten und Formen : C. hy- hrida var. Sahlhergi Y\%q\s.., ordina ta Jskowl. (Fig.), contorta Fisch., liUeriferaGhA. (Fig.), suhlacerata ^o\^\j , descendens Yi'&Gh.., Kirilotvi Fisch., ohliquefasciata Ad., Do/chlpifrotvi Jak. (Fig.), chilolerwa F\s,ch., inscripta Zowhk.., litoralisF., melancho- lica F. und var. d ignosce7ida Chä., orienfalis Dej. , Sturmii Men. und var. Stau- dingeri Kr. , decempustulata Men. , octiissis Dohrn, turliestanica Ball, und var. ? maracandensis Solsky, Fischeri Ad. und var. alasanica Motsch., Galathea Thieme (Fig.), lacteolaFsiW. und var. undata Motsch. (Fig.), BurmeisteriF'Y&oSi. mit var. jmnctata Dokht. und Balassogloi Dokht. , Stolitzkana Bat. , Chandoiri Ball. — Heyden (^"^j bespricht Cicindela litoralis F. und Burmeisteri Fisch. von Kuldsha und vom Naiyn-Fluß, Shirmi Men. var. Staudingeri Kr. und Elisae Motsch. von Samarkand, megaspiloia Dohrn und ^m7oen Fisch, von Namagan. Smith (') be- spricht Varietäten nordamericanischer Cicindelen. Rautenberg verzeichnet von Wisconsin 10 sp. Kolbe ("*) bespricht Cicindela rufomarginuta Boh. von Mukenge. Cicindela turhestanica Ball. var. disritpta u. Namagan p 276, vitiosa n. Kuldsha p 283; Heyden (^'*) — octussis n. Merw, Turcomannien ; Dohrn (^) p 255 — hyhrida var. restricta Fisch. = var. Sahlhergi Fisch., hyhrida var. alhojnlosa n. Narynpol, Fer- ghana p 248, /esif/«« Motsch. =? suhlacerata 8o\skj, /erga7iensis n. Fig. Margelau p 256, decenipiistulata Men. var. nigra n. Samarkand, Djenn, Karschy, var. nigrae- lahris n. Taschkend p 266, gissariensis n. Gissar, Karatag p 269, campestris var. persana n. Persien p 270, caucasica Fisch, non Ad. = Fisclieri Ad. p 271, Schrenhi Gebl. gute Art, Sehr enki Fisch, non Gebl. = lacteola Fall. var. undata Motsch. p 274, lacteola var. melanoleuca n. Fig. Talki p 274, Burmeisteri Fisch, var. uni- punctata n. Songarei p 276, megaspilota Dohrn = Burmeisteri y^X. Balassogloi Dokht. p 277, Bur7neisteri vav . deceynmacxdata rx. Tschaar-tasch p 277, Wil/ansin. Fig. Monk-söu p 279, extemomarginata n. Fig. Kouldja, illecehrosa n. Bucharei, Kour- gan Tube p 280; Dokhtouroff — trisignata var. incompleta n. Kustendje ; Fair- maire (^) p 8 — campestris var. mßpennis n. Harburg, hyhrida var. striatoscutel- lata n. Zürich, Engelberg; Beuthin (') p 106 — crnnpestris var. SaxeseniFx€\\.. - var. farcllensis Graells, hyhrida var. strigatoscutellata und sylvicola var. laeviscutellata Beuthin unhaltbar; Kraatz (^'^) p 244 — regina n. Fig. p 49, exigua n. p 50 Mu- kenge; Kolbe (^) — cincta F. und equestris Dej. var.; Dohrn [^) p 3S3. Tetrarcha euphratica var. armeonaca n. Amou-Daria; Dokthouroff p 247. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 237 Familie Carabidae, *Riley (^) bespricht die Eiablage von Chlaenius impimcflfrons. Nach SchwarZ (2) leben Moria moniUcornis und ? Psydrus piceus unter Fichtenrinde, Dromius atriceps in Grashalmen, Onota floridana zwischen den Blattrippen des »Cabbage palmetto«. Fowler i^') bespricht eine Anomalie der Tarsenbildung von Pelophila horealis Payk., Gourguechon Anomalien des Carabus auratus in der Rippenbildung der Flügeldecken, Gozis (') ein abnormes Exemplar von Brachynns crepifans. Landois (•) beschreibt einen Carabus cancellatus mit S Beineu und gibt diesem In- dividuum einen besonderen Varietätsnamen [!]. M. Quedenfeldt (^j beschreibt Tetramerie der Tarsen bei Poecilus cupreus. SGyrig bespricht einen PterosticJms melanarius mit '^ gabiiger Antenne. Kraatz-Koschlau (^) erörtert in sehr detaillirter Weise die sog. echten Farben der Carabus- und Procerus- AxiQn, die durch Überstreichung der Thiere mit dicker Lösung von Gummi arabicum und nachträgliche Entfernung des trocken gewor- denen Überzuges in ihrer Reinheit hergestellt werden. Bezüglich der Details ist auf die umfangreiche Arbeit zu verweisen. Berge [^) behandelt die Umwandlung der metallischen Farben von CarahusSixiQw durch die Anwendung von Säuren und Alkalien und bespricht die Farbenvarietäten des Carabus auronitens^ die er sämmt- lich in allen Nuancen auf chemischem Wege herstellen konnte. Gehin & Haury {^) haben einen synonymischen und systematischen Catalog der Tribus Carabitae herausgegeben. Gehin theilt dieselbe in 3 Subtribus : Carabites mit 47, Calosomites mit 16 und Cychrites mit 5 subg. Diese 3 Subtribus coinci- diren mit den 3 Gattungen Carabus^ Calosoma und Cychrus, die von Gehin allein acceptirt werden, während allen übrigen Sectionen nur der Werth von Untergat- tungen zuerkannt wird. In einer »Synopsis des Genres et des Sous-genres« werden sämmtliche subgen. (im Sinne des Verf.) characterisirt, darunter Leptocarahis, Carabosoma und Aulacopteron neu. Anhangsweise sind 76 Diagnosen von n. sp., var. oder subvar. beigefügt. Characteristische Details zahlreicher Arten werden von Haury illustrirt. Bemerkenswerth sind die Sculpturdarstellungen einer An- zahl neuer Arten und Varietäten, der Formen der violaceus- und Ceroglossus- Gruppe, von Procnisies incerüis, von Carabus graecus, 7inmida, arboreus, porrecti- collis, Gossarei, der Varietäten des C. intricatus, von C. auriculatus^ Starckii, toro- sus, cavernosus, catenatus var. alternatus, pyrenaeus var. costatus, regulus, Crato- cephaliis cicatricosus, Eupachys Brandti^ ferner die schematischen Abbildungen der Forcipes von 26 Formen der violaceus- Germari-(JX^x^^^\^Q und einer Anzahl Cero- glossus, die Umrißfiguren vieler Arten und die Totalfiguren von Carabus regu- lus Dohrn, Calosoma caraboides Raffr. , Callisthenes elegans Kirsch , Coptolabrus Sckrettki var. Hauryi, pustidifer Luc, Gekini Fairm., damasteroides Geh. und Da- master blaptoides Koll. Die Variabilität in den Oberlippen und Kinnzahnbildung bei den Arten der Proernstes- und C/^oeifome/as-Gruppe wird durch schematische Figuren illustrirt. Reitter (^) liefert eine Bestimmungstabelle der europäischen und mediterranen Leistus, 27 sp., 4 n., und gibt schematische Umrißfiguren der Thoraxformen von 20 Arten. Faust (^) übersetzt Solsky's Bestimmungstabelle der Callisthenes- Arten aus Fedtschenko's Reise in Turkestan (12 sp.) Habelmann (^) bespricht die Unterschiede von Argutor sfrenuus Pz. und diligens Sturm. Habelmanni (^) stellt für Ptcrostichus placidus Rosh. die Untergattung Crisimus auf. Gozis (^) p 116 bespricht die Unterschiede von Ophonus puncUcollis und riißbarbis und gibt eine Bestimmungstabelle der mit Bembidium femoratmn Sturm verwandten Arten. Abeille (^) gibt eine neue Beschreibung von Acupalpm longicomis Schaum. Reit- ter (^] erörtert neuerdings die Unterschiede seines Acupalpus guarnerensis von 238 Arthropoda. longicornis Scbaiim. Heyden (^) und Kraatz (^) behandeln die Synonymie der Or- MowiMsarten. Kraatz-Koschlau (-) bespricht eingehend die specifische Umgren- zung der ProcerxisSiriQTX und glaubt 8 sp. festhalten zu müssen: 1. Audouini Br. mit den Rassen breviusculus'Kv . und modestus Kr., 2. laticollis Kr., 3. tauricus Ad., 4. scabrosiis Oliv., 5. caucasicus Ad., 6. Dupoficheli De} . , 7. ffipas Cr. und 8. syriacus KoU. Kraatz (^) protestirt gegen die Zuziehung von brevmsculus und modestus zu Audouini. Reitter (^') anerkennt nur 4 sp., indem er nicht blos tau- ricus, Audouini und laticollis, sondern auch caucasicus mit scabrosus vereinigt. Dasselbe Thema discutiren weiter : Kraatz-Koschlau f^, 4, 6] und Kraatz {^, ^i), ohne zu übereinstimmenden Resultaten zu gelangen. Thomson [^) diagnosticirt oder bespricht 6 für Skandinavien neue Arten: Notiophilus biffeminus Thoms., Bem- hidium fumigatum Duft., Calathus piceus Marsh., Anchomenus scitulus Dej., Har- jialus multisetosus Thoms., ignavus Duft. Fowler (-*) constatirt das Vorkommen von Tachys parvzdns Dej. in England und erörtert die Unterschiede dieser Art von verwandten sp. Johnson bespricht das Vorkommen von Carabus monilis, Hall das des Harpalus litigosus Dej. in England. Fauvel ('^) beschreibt in der Fortsetzung seiner Fauna gallo-rhenana vorläu- fig 33 Bembidiitm aus den Untergattungen Limnaeum 3, Notaphns 4, Plataphus 1, Crampa 3, Trepanes 4, Thalanes 1, Synechostictus 6, Bembidium s. str. 10, In. *Preudhomme C^) und *Giard besprechen die Elap/trus^vten vom nördlichen Frankreich. Preudhomme (\) hat die Bearbeitung der Carabiden von Hainaut beendet. Nach der systematischen Übersicht besitzt diese Provinz 189 sp. Preudhomme {'^) fügt diesem Verzeichnisse weitere 1 1 Arten hinzu. R. Oberthür beschreibt locale Farbenvarietäten des Carabus aurojiitens vom Foret de Longes. Everts (^] hat Chlaenius tristis in den Niederlanden, Czwalina (^) Carabus Meiretriesi Fisch, in Ostpreußen, Haller Odacantha melamira bei Greifensee in der Schweiz aufgefunden. Haury (^.^lerörtert die Varietäten des Carabus caelatus und catenatus. Kraatz (^') bespricht Varietäten des C. glabratus; Birthler die Sculpturformen des Carabus Rothi Dej.; Schreiber (M fand Carabus italicus bei Görz, Piso macht die erste zu- verlässige Angabe vom Vorkommen des Carabus auratus in Ungarn. Halbherr ver- zeichet 256 Arten vom Lagarina-Thal. Gestro (*,^) bespricht die Anophthalmus der italienischen Grotten, 6 n., und bildet außer 4 neuen Arten A. Carantii Sella, lantosquinensis Ab., Picciolii Bed. und Targionü Della Torre ab. Ragusa (^) setzt sein kritisches Verzeichnis der Laufkäfer Siciliens fort mit SpJwdroides 1 , Laemo- stenus 4, Calathus 5, Bedelinus n. 1, Synuchus 1, Europhilus 1, Clibajiarius 1, Olis- thopus 2 , Stomis 1 , Platyderus 2 , Alacetus 1 , Poecilus 4 , Ancholeus 1 , Carenostylus 2. Pedius 1, Lagarus 1, PterosticJms 1, Lyperosoma 2, Melanius 2, Haptoderus 1, Percus 3, Amara 15, Arisius 4, darunter der bisher blos aus Algier bekannte A. opacus Er., Ditomus 6, Apofomus 2, Dapti/s l, Aci7ioj}us 6, Scybalicusl, Diachro- nws 1, Dichirotrichus 2, Anisodactylus 4, Ophonus 11. RaguSa (^) bespricht Blechrus confusus Ch. Bris. Ch. Oborthür erwähnt vom Djurjura in Algier Paitro- bus punctatissimus Fairm. und eine violette Form des Carabus morbillosus. Heyden (2) verzeichnet 8 von Herrn Starck im tscherkessischen Caucasus ge- sammelte Carabiden, darunter 4 neue. Nach Reitter (^) kommt Masorcus rufico7-nis Chd. bei Lenkoran, Callisthenes substriatus Motsch. im Talyschgebirge vor. Heyden i^*^) bespricht Cratocephalus cicatricosus Fisch.. Carabus Bogdanovi Ball., ejusd. var. Kuldshaensis Ball., furkestanicus Heyd. [carbonarius Ball, nee Motsch.) von Kuldsha, Goniognathus gracilis Kr., Derus carbonicolor Solsky, Poecilus Staudingeri Heyd., Harpalus aj^nü Ball, von Alai, PanUiophyrtus turcortiannorum Thieme, Ani- sodactylus punctipennis Gebl.. Acupalpus dorsalisY . var. u. Derus janthinipennis Solsky 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., FauniBtik und Systematik etc. 239 von Namagan. Kraatz {^^) beschreibt Coptolabrus Jankowskn R. Oberthür vom Amur. Heyden [^) verzeichnet das bisher nur von Port May bekannte Platysma fugax von Nicolajevsk, Tachys globulus Dej. und Metabletus palUpes von Chaba- rofka und Beinhidium dolorosum Motsch. von Pochrofka als neu für das Amurge- biet. Sahlberg (^) verzeichnet von der Tschuktschen-Halbinsel Carahus 1, Feronia 14, 8 n., Ama?'a 2, davon sind Carahus truncaticollis , Feronia Theeli, scita, man- dibularis^ arctica, Amara suhsulcata und strigicollis über das arctische Sibirien ver- breitet. Feronia quinquepunctata ist von Kamtschatka, quadricollis von der West- Küste des borealen Nord- America bekannt. Die letztgenannten Feronien, die bei- den ^wara und Carabus truncaticollis werden genauer beschrieben oder diagnosticirt. Von der Berings-Insel verzeichnet Sahlberg (^) : Nebria dubia (über Ost-Sibirien und Kamtschatka verbreitet) und Patrobus septentrionis Dej. (bis Mittel-Europa nach Westen verbreitet) , von der nordamericanischen Küste am Berings-Sund verzeichnet Sahlberg (^) : Nntiophilus \, Nebria 2, 1 n., Feronia 5, 3 n., Amara 1 . Davon ist Notiophilus aquaticus bis Mittel-Europa, Feronia arctica über das arctische Europa und Asien, frigida über das ganze arctische Sibirien verbreitet, Nehria frigida Dej. ist auch von Südost- Sibirien bekannt, Anthony bespricht das Vorkommen von Lebia grandis in Massachusetts. Rau- tenberg verzeichnet von Wisconsin 259 Laufkäfer. Horn ('') gibt Umrißfiguren von Stolonis Ulkei Hovn, Platynus quadrimaculatus Horn, Brachylobus caurinus Horn, lithophilus Say und bildet die Flügeldecken von 6 Lebien ab. Burmeister liefert eine Monographie von Eurysoma mit S südamericanischen Arten, davon 2 n. Sharp (•) beschreibt 1 Brachygnathus und 1 Lobobrachus von Bahia. Kraatz- Koschlau {''') bespricht ausführlich Ceroglossus sybarita Gerst., speciosus Gerst., FaWü'iae Hop e, DariviniHo-^Q, gloriosus Gerst., Buqueti Lap. und dessen var. elega7itissimus B,eed. Kraatz {^^,'^-; bespricht Ceroglossus Darivini Roiie von Chiloe und Dartvini Ger&t. = indiconotus Sol. von den Anden. Fairmaire [^) führt von den Feuerlands-Inseln auf: Lissopterus 1 u., Antarctonomus Y^Migadops 4, Carabus 1, Cascellius 3, Merizodus 1, Trechus 1 n. Außer den neuen Arten werden Lis- sopterus quadrimaculatus Waterh., Migadops falUandicus Waterh. von den Falk- lands-Iuseln, Migadops virescens Waterh., Cascellius nitidus u. aeneoniger Waterh. von Feuerland, Merizodus Macleyi Boh, von Falkland und Feuerland und 2 Tre- cÄMsarten von den Falklands-Inseln diagnosticirt. Blackburn & Sharp (^^) verzeichnen von den Hawaii-Inseln: Lebiini: PlocU- onus l. Saronychium 1 ; Anchomenini: Metromenus 19, Colpodiscus 3, Barypristus 3 , Blackburnia 3 , Disenochus 2 , Atrachycnemis 1 , Cyclothorax 2 1 ; Bembidiini : Tachys 4, Bembidium 4. Bis auf den weitverbreiteten Plochionus pallens sind sämmtliche Arten der Inselgruppe eigenthümlich; dasselbe gilt von der Gattung Saronychium sowie von sämmtlichen Anchomeninengattungen bis auf Cyclothorax, von welcher übrigens außer den 21 hawaiischen sp. nur noch eine einzige Art aus Neu-Seeland bekannt ist. Abgebildet werden von den Verff. : Metromenus fossipennis, wysticus, Colpodiscus lucipetens^ Blackburnia insignis, Cyclothorax multi- punctatus und scaritoides. Dohrn (^) p 147 bespricht Glyptus sculptilis Br. von Monrovia und Akuse (Guinea-Küste) . Abax Hetzeri n. Monte Grigna, Ober-Italien; Müller (2) p 420. Acupalpus lemovicensis Bleuse zu Anthracus; Reitter (^1 p 274 — guarnerensis Reitt. = longicornis Schaum; Abeille (') p 154, quod non Reitter (^) p 155. Agonum numidicum Luc. var. Reitteri n. Sicilien : Ragusa (^j p 154, (2) p 190 — curvipes Tourn. = atratum Duft. var. DahliV>o\YQ\ Ragusa (^) p 155. Amara refulgens Reiche = concinna Zimm. var.; RaguSa {^) p 257 — elliptica n. 240 Arthropoda. Blagowestschensk ; Heyden (^) p 305 — [Cyrtonohis) angustata n. Berings-Sund; Sahlberg (^) p 51 — apachensis Casey = remotestriata Dej. var. relucens Mannh., marylandica Casey = hasillaris Say, pallida Casey = rubrica 'S.sl^.iferruginea Casey = ruhricaB.Si\(\.. var.; Horn (^o] p io8. Amerinus Casey unhaltbar = Bradycellus; Horn (^"j p 111. Anchomenus elevatus White = Novae Zealcmdiae Fairm. p 297, Colensonis White = ? otagoensis Bat., deiüanatus White zu Dicrochile p 298; Sharp ('^] . Anisodactylus cfr. Harpalus. Anophthcämus [Trechus] Doderii n. Grotta di Suia, delle Fate, Dragonara, Tana di Begia o del Campetto p 139 Fig, Canaevae n. Grotta di PoUera p 141 Fig., Gen- tillein. Grotta d'Eca Fig., Spagnoln n. Grotta della Giacheira p 143 Fig.; Gestro (1) — Vaccae n. Grotta della Besta p 532, apenninus n. Grotta della Madonna, Buranco delle Dotte p 533; Gestro (^). Antarctia quadricollis Söl. = hlanda Dej.; Fairmaire (2) p 39. Antisphodrus Plasoni n. Rhilo Dagh p 357, Lederi n. Caucasus, Helenendorf p 358, suramensis n. Suram-Paß p 360 ; Reitter (^^). Aulacopteron n. subg. für Calosoma viridisulcatum Chd. und costipenne Chd.; Gohin p XXXIV und p 67. Barytackys glossema Casey = granarius Dej.; Horn (^"j p 108. Bedelinus n. für Calathus circumseptus Germ. ; RagUSa (^) p 125. Bemhidium [Notaphus] obliquum Sturm = varium Ol. var. p 173, cantalicumn. Cantal, Le Lioran p 188, rivulare Dej. = minimum F., latiplaga Chd. = tetraspilotum Schauf. = minimum F. var. p 105; Fauvel (^-) — [Notaphus] varium Ol. var. Permskoe-Mülki ; Heyden (^) p 304 — vernula Casey = constrictum Lee., acticola Casey = constrictum Lee. var., militare Casey = picip es Khj., vividum Casej = contr actum Say; Horn C*^) p 108. Blechrus syriaciis n. Syrien p 102, Abeillei n. Hyeres, Marseille, Collioures, Anda- lusien, Portugal, escorialensis n. Escorial, confimis n. Algier, Sieilien, Andalusien p 103; Ch. Brisout. Brachycoelus Duponti Chd. = Migadops vire&ceiis Waterh.; Fairmaire (2) p 36. Brachygnathns Burmeisteri u. Bahia ; Sharp (^) p 402. Brachylobus catirinus n. Yuka, Californien ; Horn {^) p 134 Fig. Brachynus sticticoUis n. Madagascar ; Fairmaire (^) p 223. Broscus aereus White = Oregiis inaequalis ] Sharp (^) p 298. Calathus gigantcus Dej., luctuosus Latr., glahricollis Dej. als Varietäten xsixi fuscipes, mollis Marsh., micropterns Duft, als Varietäten mit melanocephalus zu verbinden ; Ragusa (^) p 121-125, p 190. Cfr. Bcdelimis. Callisthenes cfr. Calosoma. Calosoma [Calodrepa] denserugatum u. Ost-Sibirien p 58, [Callisiriga] Sayi Dej. var. abdominale n. Mexico, (id.) laterale Kirb. var, Orbignyi nom. nov. für imbricatum Brüll, nee Klug., [Camedula] granatense n. Neu-Granada p 59, [Ctenosla] rugo- siim Dej. subv. elegans n. Mozambique p 60, [Charmosta] lugens Chd. var. Davi- dis n. Mou-Pin p 61, [Campolita] algericnm n. Fig. Tougourth, Sebdon p 62, anro- punctaiuniFajk. s,uhy. Dit/tschmidi n. Österreich, ejn&ä.suhv./unestiimn. Caucasus, [Carabosoma] angulicolle Chd. var. uniforme n. Mazatlan, [Carabosoma] Forreri n. Arizona p %A , glabratimi Dej. var. Z»o/2't7ar2Mmn.Bolivia, [Blaptosoma] atrovirens Chd. var. obscurum n. Mexico p 65, laeve Dej. var. rußnum n., laevigutum Chd. var. ni- tidum n. striatipenne Chd. var. dubitatum n. Mexico p 66. [Chrysostigma] mexica- num n.; ibid. p 67, [Callisthenes] persicus n. Persien p 68, (id.) luxatiis Say var. opacus n. Oregon p 70 ; Gehin — [Carabosoma] truncatum n. Mexico; Haury [^] p 64 — Morriso7iün. Colorado; Horn C') p 128. Cfr. Aulacopteron, Carabosoma und Carabus. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 241 Carahosoma n. subg. für die Calosmna aus den Gruppen des angtilahim Q\\Q\r . , obso- letum Say u. glabratum Dej. Hieher 18 Arten; Gehin p XXXII, G3. Carahus semistriatus n. Namagan ; Kraatz (^^) p 283 — [Neoplectes, Plectes] Starcki n. Fig. Atchisclilio im tscherkessischen Caucasus ; Heyden (^) p 185 — [Plectes] Reitteri n. Fig. ibid. ; Retowski f^) p 3 — [Chaetomelas] Ehrenbergi Klug. var. Juclaicus n. Syrien p 5, [Pachystus] joorrectangulus n. Pontische Alpen p 6 Fig., [Pachystus] procrustoides n. Diarbekir p 7, [LamprostHs] Jani nom. nov. für moesttcs Crist. non Dej. p 8, [Megadontus] croaticus Dej. subv. carniolicus n. Krain p 10, (id.) purpurasceiis F. subv. subcrenatus n. Jura p 12 Fig., [Pachycra- nion) Schönherri ¥\?,c\i. subv. Gouberti n. Sibirien p 12, [Mesocarabus] PossüDey var. Costae nom. nov. für var. castanetpeniiis Costa non Men., Possn var. Piraz- zolii n. Süd-Italien p 14, [Mesocarabus] catenulatus Scop. subv. gallicus n. Vo- gesen p 15, ejusd. var, Mayeti n. Alpen u. Pyrenäen, ejusd. var. Mulsanti n. Hautes Pyrenees p 16, [3forphocarabus] Scheidleri Pz. var. gratiosus n. Sieben- bürgen p 18, (id.) irkoutskensis nom. nov. für alyssidotus Fisch, nee. lUig. = interstitialis Motsch. nee Duft. , (id.) aeruginosus Fisch, subv. capucinus n. West- Sibirien p 22, [Eutelocarabus] conciliator Fisch, subv. amurensis nom. nov. für femoralis Motsch. non Geh. p 23 , (id.) Deyrollei Gory var. luctuosus n. Pyrenäen p 23, (id.) arvensis F. subv. ruficrus nom. nov. für var. pomeranus aut. nee. Ol., ejusd. var. aeratus nom. nov. für aereus Dej. nee Fisch. , [Hemicarabics] nitens L. var. fennicus n. Finnland p 24, [Limnocarabus] granulatus L. subv. fidvipes n. Österreich, subv. Solskyanus n. Sibirien, (id.) incompletus Fisch, var. paludis nom. nov. iWx palustris Dej. ex p. p 26, (id.) Maeander Fisch, subv. obscuratus n. Sibirien p 27, [Sphodristocarabus] Adamsi Ad. var. Eichivaldianus nom. nov. für Pichioaldi Kol. nee Fisch., (id.) Eic htv aldi Fi&ch. var. Thomsonianus n. Cau- casus p 28, [Eucarabus] Ullricht Clairv. subv. parvus n, Steiermark, ejusd. var. Stussineri n. Krain p 29, (id.) graniger Pall. var. sczobroniensis n. Rumänien, ejusd. var. Mühlfeldi n. Ungarn p 30, cancellatus lUig. subv. femoralis nom. nov. für rufofemoratus Letzn. nee Motsch., ejusd. var. tamensis n. Depart. Tarn p 31, (id.) catenatus Pz. var. albanensis n. p 32, [Eurycarabus] numida Lap. var. hipponensis n. Fig. Bone-Bougir, ejusd. var. oranensis n. Fig. Oran, (id.) Famini Dej. var. algiricus n. Fig. Algier p 33, (id.) berberus n. Con- stantine p 34 Fig., (id.) nigosusF.YSLY. macurebus n. Tlemcen p 34, [Coptolabrus] smaragdinus Fisch, var. damaster oides n. Fig. Amur, (id.) Sehr encki klatsch, var. Hauryi n. , ibid. p 35 Fig., [Plectes] Fabricii Pz. var. poloniensis nom. nov. für polonicus Schm. nee Motsch., [Iniopachys] pyrenaeus Serv. var. costulus nom. nov. für costidatus Kr. nee Germ., ejusd. var. punctatus n. Hautes-Pyrenöes p 40, [Chrysocarabus] hispanus F. subv. gabalicus n. Lozere , (id.) viridis Dej. Artefact, [Carabus s. str.) Solieri Dej. subv. Clairi n. Alp. marit. p 41, (id.) lineatus Dej. subv. bilineatus n. Portugal, auratus L. subv. atripes n. Basses Alpes, ejusd. var. catalaunicus n. Champagne, ejusd. var. Bndlei n. Pyrenäen p 43, (id.) melancholicus var. pyrenaeensis n. , ibid. p 44 , exaratas Quens. var. georgicus n. Caucasus, Georgien p 44 [Oreocarabus] borealis n. Sibirien p 48, (id.) convexus YSiY. gracilior n., YSiY. pygmaeus n. Siebenbürgen p 49, (id.) nemo- ralis Müll. var. contractus n. Hautes Pyrenees, [Trachy carabus] Mannerheimi Fisch, var. sinensis n. Nord Peking, p 51, (id.) campestris Fisch, var. planus, nom. nov. für var. planatus Motsch. necChd. p 51, (id.) coriaceus n. et ejusd. var. subcoriaceus n. Issykkul p52, (id.) striatidus nom. nov. für striatus Ball, nee Chd. p 52, [Oreocarabus] Gautieri nom. nov. für Ledereri Gaut. nee Schaum, p 89 ; Gchin — [Mesocarabus] catenulatus Scop. var. planiuscidus n. Pyrenäen p 15, (0/-eocar«5tscens Mannh. und semm?VeHs Horn ; CaSGy (1) p 313 Fig. Bryojmrtis parvulus Casey = rufescens Lec. var. testaceus Lec. ; Hom (^"^j p HO. Caßus cfr. Bryonomus. Calodera attenuata n. Californien; Casey (^) p 306 — nitididan. Chacabuco; Lynch- Arribälzaga p 86. Calophaemi u. prope Lithocharis p 267, basalis n. Chacabuco p 270; Lytich-Arri- bälzaga. Campoporus n. Aleocharini prope PMlothermes (= Euthorax Sol. ?p 384) p 64, elegan- tuliis n. Chacabuco p 66 ; Lynch-Arribälzaga. Chloecharis n. verwandt mit Scopaeus und Lithocharis p 257, rufula n. Chacabuco p259; Lynch-Arribälzaga. 250 ' Arthropoda. Chroaptomus n. prope Thilonthus. Typus Philonthus ßagrans Er., regalis n. Fig. Pa- nama; Sharp (2) p 437. Cohisa n. Aleocharini prope Falagria p 288, gracilis n. p 292, eximia n. p 293, va- lida n., exilis n. p 294, grcmdicollis n. p 295 Californien; Casey (^). Compsochilus procerns Epp . = cephalotes Er. p 410, miles Scriba gute Art p 4 1 1 , Hey- deni n. Ungarn, Croatien, Slavonien, Astrachan p 414; Eppelsheim (^). Conurus ohscuripetinis Fairm. & Germ, und? setosus Sharp = Conosoma testaceum Sol. ; Lynch-Arribälzaga p 106 — versicolor Casey = crassnm Grav., imbricatus Casey = jmbescens Payk., nccultus Casey = basale Bay, corticola und selifer Casey = opi- cum Say; Horn (^") p HO. Cryptobium anceps n. Arizona p 90, Lecontei n. {caulinum Lee.) Südwest-Texas Kansas p 94, vayum n. Südwest-Texas p 95, arizonense n., vittatum n. p 96, ventrale n. p 97, propenim n. p 101, nactum n. Arizona p 102, captito Casey = pallipes Grav., convergens Casey, parallehim Casey und proximum Casey =flori- danumljQC. p 104, parcum Lec. = obliqumn heG., ßavicorne Leo. = pallipes Grav.; Horn (3) — collare n. Mexico, Guatemala, Nicaragua, Panama p 507 Fig., um- bratum n. Guatemala p 508, Salvini n., grandiceps n. ibid., stipes n. Mexico p 509, adver sum n. ibid. p 510, speculatus n. Fig., palustre n. ibid. p 511, fer- rugineum n,, luridum u., terminatum n. ibid. p 512, rubeculum n. ibid., aequcäe n, Fig. Guatemala p 513, conforme n., formosuni n., concolor n. Mexico 514, mix- tum n. Fig. Panama, chontalense n. Nicaragua p 515, venustum n. , politulum n. Mexico, coloratum n. Guatemala p 516, complectensu. Mexico, stygicum n. Mexico, Guatemala, tinctipemien. Guatemala p 5 1 7 , guatemalense n. Guatemala, Nicaragua, puncticolle n. Guatemala, modestum n. Panama p 518, j'ej'unum n. , derasum n. Guatemala p 519, crassw^wm n. Mexico, certatumn. Nicaragua p 520, FloAri n. Mexico p 521, antonienseu.^ßlarium n. Guatemala, erransn. Panama p 522, rugo- sipenne n. confine a., arduum n, ibid. p 523, tenuicotme n. ibid., ovaticeps n. Guatemala, Panama p 524, celatum n., subgracile n., Guatemala p 525, apicipenne n. Mexico, Guatemala, Nicaragua, nasxitum n. Fig. Nicaragua, nigriventre n. Mexico, Guatemala p 526 Fig., cognatum n. Panama, perforatum n. Nicaragua, Panama, Venezuela p 527, centrale u. Mexico, Guatemala, Nicaragua p 528 Fig. affine u. Mexico, Nicaragua, grandicolle n. Mexico, Guatemala, brevipenne n. Fig. Guatemala p529, inquisitor n., monticola n. Guatemala, mexicanunm. Mexico p 530, Uthocharinum n., ducale n. Fig. Panama p 531, grande n. Mexico Fig., jylanatum n. Panama, rostratum n. Fig. Guatemala, Panama p 532, aberrans n. Guatemala p 533 ; Sharp (2) ^— paranense u. Baradero, Chacabuco p 208, argen- tinum n. p 211, apicale u. p 214, rubricolle n. p 216 Chacabuco, rufipes n. Bara- dero p 219, confusum n. Chacabuco, Baradero p 221, atratum u. Baradero p 224, disjunctum n. Argentina, Uruguay p 226, bicolor Burm. nee Grav. =basale Blanch. ; Lynch-Arribälzaga — cribripenne vl. P US, apicale u. p 119, rugiceps n. p 120 Adda, Goldküste; Eppelsheim (^]. Cryptocompsiis n. ^xo'go, Oligota p96, venustus n. Baradero p98; Lynch-Arribälzaga. Dasijnotus ßavescens, optabilis, aeraria und thoracica Broun zu Calodera ; FaUVel (^) p 312. Dianous chalybeus Lec. = coerulescens Gyllh., zephyrus Casey = nitididus Lec. ; Horn ("') p 113. Diestota montana n. Waimea, Hawai, incognita n. Hawai; Blackburn p 121. Diochus inornatus n. Nicaragua, Panama p 466 Fig., vilis n. Guatemala p 467; Sharp (2). Dolicaon castaneus n. p 114, limbatus n. Adda, Goldküste p 115; Eppelsheim (^). Drusilla ? extrunea u. Baradero; Lynch-Arribälzaga p 33. Echiaster rxigosulus n. Baradero; Lynch-Arribälzaga p 281. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 251 Edaphus carmaius Casey imd luculentus Casey = niü'dus Lqc. ; Horn (^-') p 109 — afncamis -a. Adcla, Goldküste, Abyssinien ; Eppelsheim (^) p 139. Erchomus pallidus n. Chacabnco ; Lynch-Arribälzaga p lOS — Havidics Casey = ventriculusYiV.; Horn (i"^) p 109. Emplenota maritima Casey = Polystoma maritimum\ Hom (^^) p 109. Etidectus crassicornis n. Louisiana; Leconte (') p 4. Eudera cava Sharp zu Ophioglossa Fauv.; Lynch-Arribälzaga p 27. Falagria occidua n. p 285, laticollis n. p 287 Californien ; Casey (') — Shatpi n. [venushda p 30) Prov. Buenos Aires; Lynch-Arribälzaga p 383. Geostihaheringensis n. Tsohuktschen-Halbinsel ; Sahlberg (^) p 27. Gyrophaena angularis Vi.. Adda, Goldküste; Eppelsheim (^1 p 111 — punctata 'Rvonw vielleicht zu Oxytelus, sternalis, nugax, densicor7iiSj versicolor, socialis Broun zu Homalota oder verwandten Gattungen, atriceps Br. und comigera Br. zu Honialota^ philonthoides 'Qv . = Aleochara suhne7iea¥ai\y., fuscicornis^v. zuTachyusa, rußpennis Br. zu Calodera] Fauvel (') p 312. Heterolimis n. Typ. Xantkolinus puncticeps Guer. (Fig.) von Costa Rica und Colum- bien; Sharp (^j p 475; cfr. XanthoUnus. Heterophaena n. Aleocharini prope Homalota et Microdota p 45, palliditarsis n. Chacabnco; Lynch-Arribälzaga p 79. Heterothops bonariensis n. p \Td, fallax n. p 124 Chacabuco; Lynch-Arribalzaga. Holisus protensus n. Guatemala, confinis n. Panama p 462, Solskyi n. [ater Solsky necMotsch.?) Mexico, prolixusn. Fig. Guatemala p 463, atratulusn.,filum\\., rufi- pes n. Guatemala, pallens n. Panama p 464, ohlitus n. Fig. Guatemala, elatus n. Fig. Guatemala, Panama p 465, eleusoides n. Guatemala p 466; Sharp (^) . Homalium algarum n. p 3 1 6, rugipenne n. p 3 1 7 Californien Casey (\1 — tectum, genale, politxdum Broun zu Ichnoderus , cremdatum Br. = Oxytelus rugosus Grav., jmllum, tihiale Br. wahrscheinlich zu Oxytelus ] Fauvel [~') p 313. Homalolimis n. Typus XanthoUnus canaliculatus Er. p 472, affinis n. Guatemala, di- lutus n. Mexico p 473, apicalis n. Fig. ibid., sanguineus n. Guatemala, divisus'EtY. var. guatemalenus n. ibid. p 474; Sharp (^). cfr. XanthoUnus. Homalota minuta n. Chacabuco: liv ida'^x ., fulvipennis 'K.ol. ., lividipennisYiV. und sqtia- lidipennis Fairm. = Colpodota melanaria Sahlbg. p 59-60 ; Lynch-Arribälzaga. Hymeneus u. prope XanthoUnus, Godmani n. Fig. Costa Rica, Panama p 487, spien- densn.j cephalotes n. Fig. Nicaragua, divisus n. Panama p 483, amethystinus w. Mexico, laeticulus n. Panama p 489; Sharp (~j ; cfr. XanthoUnus. Hyobates cali/ornicus n. p 307, nigrinus n. p 308; CaSGy (')• Lathrohium [Glyptomerus] anophthalmum n. Ungarn, Serbien; FauVel (^) p 33 = coe- CMWiFriv. ; Frivaldszky p 149 — tricolo r Cas,ey = ventrale Lee, inops Casey = othioides hec . ; Horn ('**) p 109 — rufopartifuni Fairm. et Germ. = dimidiatum Say p 238, assimile n. Baradero, Chacabuco, Tandil, Buenos Aires p 240. bona- riense n. Baradero, Chacabuco p 242; Lynch-Arribälzaga — subseriatum n. p 116, incertum n. p 117 Adda, Goldküste; Eppelsheim (^) Leptacinus grandiceps n. Fig. Guatemala, Panama, oscillans n. Nicaragua, Panama, p 490, clavicornis und subtilis Er., nitidus Sharp und vielleicht auch debilis Er. zu Somolep)tus n. p 495, ßlarius Er. zu Metoponcus p 503; Sharp p) . Leptusa (?) dubia n. Chacabuco; Lynch-Arribälzaga p 88. Lestcva truncata n. Californien; Casey (') p 322. Linidius tenuipes und extremus Sharp zu Thyreocephalus\ Sharp (^) p 499. Linoderus n. prope Philonthus, Fühler weit hinter dem Vorderrande der Stirne ein- gefügt, graciUpes n. Fig. Panama; Sharp (-) p 452. Lispittodes (?) qtiadratus n. p 125, pallescens n. Honolulu; Blackburn p 126. Lithocharis incompta n. Hawai, Hilo ; Sharp (^i) p 124 — compta zw Domene; 252 Arthropoda. Fauvel C') p 312 — atricapilla u. Chacabuco p 254, fastidiosa Fairm. & Germ. = ockracea Grav. p 254; Lynch-Arribälzaga — peregrina \i. p 130, nitidiventris u. Adcla, Goldküste p 131; Eppelsheim (^). Lithocharodes spinigera n., simillima u. Guatemala, armata n, Nicaragua p 491, germana n., fusciventris n. Guatemala, Flohri n. Mexico p 492, gracilis n. Nica- ragua, Pauama, sordida n. Panama, puncticeps n. Mexico p 493, fuscula n., ru- fida n., collaris n. Guatemala p 494 ; Sharp {'^] . Maseochara californica n. Californien ; Casey (') 309. Mecorhopalus ater Sol. = Aleochara fuscipes F.; Lynch-Arribälzaga p 67. Medon iSimom n. p 133, mfermixttis n. p 134 Adda, Goldküste; Eppelsheim {^) . Metoponcus guatemalensis n. Guatemala, cingidatus n. Panama p 503, longiceps n. Panama Fig., varians n. Mexico, Guatemala p 504 Fig., sinuatus u. Mexico, minutus ^. Panama p 505; Sharp (^) . cfr. Leptacinus. Microdota bonariensis n. Chacabuco p 51, (?) decolorata u. ibid. p 53; Lynch- Arribälzaga. Misantlius n. prope Philonthus p 393, optatus n. Mexico Fig., torquatus u. Guate- mala, carinulatus n. p 394 Fig., discedens n. Mexico p 395 ; Sharp C-^) . Musicoderus n. verwandt mit Belonuchus und Paederomimus, cephalotes n. Fig. Pa- nama p 455, gracilis n. Nicaragua p 456; Sharp (-i . Mycetoporus inquisitus Casey = splendidus Grav.; Horn ("^) p 110. Myllaena pacifica Vi. MaunaLoa, Hawai p 121, oahuensis n. Oahu p 122; Black- burn — dilatipes Fairm. & Germ, und femigaia Fairm. & Germ. = parvicollis Kr.; Lynch-Arribälzaga p 99. Myrmecoxenia n. Aleocharini prope Orphnebius p 35 und 383, pauperana n. Chaca- buco p 37 ; Lynch-Arribälzaga. Myrmedonia aculeata u. p 100, jncipes n. p 102, Kopjn n. p 103, piliventris n. p 104, angusticollis n. p 105, costata n. p 107, marginata n. p 108, alternata u. p 109 Adda, Goldküste; Eppelsheim ('^j — argentina u. Chacabuco p 4 1 , basalis n. ibid. p 44 ; Lynch-Arribälzaga. Nudobius celatus n. Mexico, Guatemala; Sharp {}) p 502 Fig. Ocalea intermedia n. Chacabuco p 80, funebris n. Baradero, Chacabuco p 82 ; Lynch- Arribälzaga. Odoniolinics n. Charactere von Philonthus und Belonuchus vexemlgend , fasciatus n. Fig. Panama; Sharp (^) p 454. Oedichirus melamirus n. Adda, Goldküste; Eppelsheim (^) p 138. Oligonotus n. Phytosini, prope Actosus et Arena p 89, exiguus n. Chacabuco p 91 ; Lynch-Arribälzaga. Oligoia Kaimie7isis n. Kauai , Waialeale p 122, longipennis n. Oahu, simulans n. Kauai, Waialeale p 123, variegatau. Oahu, Konahuaui p 124 ; Blackburn — prolixa n. Maui, Haleakala, Hawai, MaunaLoa; Sharp ('^) p 124. Omaliiim brevicolle n. Finland, Lappland; ThomSOn ;■* p 1033. Oncophorusw. nahe verwandt mit ^c/'oy;irtM«/<»W 1, Baeo- cera 1 mi(i Scaphosoma 1. Reitter (i^^) gibt Nachträge zu Erichsons Bearbeitung der Scaphidiiden von Deutschland. Reitter [^) erörtert die Unterschiede der 3 roth- braunen »Scßp/^osom« ; davon 1 n. •% Scaphosoma dilutum n. Lenkoran, Daghestan; Reitter (^) p 83. Familie Histeridae. Schmidt (^) liefert Bestimmungstabellen der europäischen Histeriden. Nach denselben besitzt das europäische Faunengebiet : Hololeptini: Hohleptai. Histe- rini: Plaiysoma 9, Margarinotus 1, Hister 60, Phelister 2, Spathochus 1, Epierus 2, Tribcdlus 2, Triballodes 1, Dendrophiliis 3, Carcinops 4, Paromalus 6, Glymma 1. Hetaeriini: Sairapes 2, Eretmotes 1, Hetaerius 8. Saprinini : Saprintn 65, Gnathoncus 2, Myrmetes 1. Abraeini : Teretrius?,^ Plegaderus 8, Onthophilus 5, Bacanius 5, Abraeiis 1 , Acritus 8, Aeletes 2. Marseul (3) reproducirt dieBeschrei- 17* 260 Arthropoda. bungen von Hololepta 1, Platysoma 2, PacJiycraerus 1, Hister 5, Triballus 1, He- taerius 8, Eretmotes 2, Sapn'nus 11, Teretrius 3, Styphrus 1, Onthophilusl, Abraeus 5, Acritus 4. Heyden (^) verzeichnet Hister corvinus Germ, von Chabarofka als neu für Ost-Sibirien. Lewis (^j beschreibt die merkwürdige Gattung Niponius aus Japan und stellt in 23 Figg. die Gattungs- und Artcliaractere dar. Hamilton ("^) bespricht das Vorkommen von Hololepta fossularis Qay . — Blackburn & Sharp (^^) verzeichnen von den Hawaii -Inseln: Carcmojjs 1, Saprinns 1, Bacanius 2 n., Acritus In., Aeletes 6, 4 n. Bis auf Aeletes basalis Lee. sind die Arten der 3 letz- teren Gattungen endogen. Lewis (^) bespricht: Platysoma Dufali Mars., Hister decollatus und ^foJra^Ms Roth, regularis \jQQ., praecox und />2/s/o Er. , Dendrophiliis sulcatus Motsch., Saprinus aequalis und rubripes Walk. LewiS (^) : Hololepta com- planata Palisot, Platysoma cinnamomeum White, Hister calidtis Er . , limbatus TvMqvii, Triballus minimus Rossi. Ab }-aeus minutissimus ^Qitt. und />?mc^M^Ms Reitt. zu Bacanius; Schmidt (*) p 322. Acritus fulvusM.2iX^. = minutus Herbst, Er., Redtb. etc., mimitus Mars. = seminulmn Ktist. ; Schmidt (^) p 241 — microscopius 'Rqiü. = f semintiltim Küü. ; Schmidt (•1) p 325 — insularis n. Honolulu; Sharp (^') p 129. Aeletes longipes n. Hawaii p 129 Fig., concenlricus n., facilis n. Honolulu p 130; Sharp (^^) — monticola n. Maui, Haleakala ; Biackburn p 130. Apobletes esurialis u. "^QU-fjUmedi, mrai^MS n. Java ; LewiS (^) p 459 — ßctitius n. Gilolo; Lewis (2) p 459; cfr. Platysoma. Bacanius atomarius n. Honolulu; Sharp (^^j p 128 — confusus n. Oahu ; Black- burn p 129. Baconian. ^xo^Q Phelisier, loricata n., patula n. Brasilien, Blumenau; Lewis {^) p 463. Carcinops striatisternum n. Ceylon; LewiS ("^) p 211. Clamydopsis inquilina n. Australien; LewiS (^) p 47 2. Coelocraera nitida n. Abyssinien, Zanzibar ; Lewis (^) p 467. Dendrophilus finitimus Walk, zu Carcinops ; LewiS (^) . Ebonius n. prope Omalodes, politus n. Para; LewiS (^) p 209. Epierus aegyptiacus Mars, nicht beschrieben; Schmidt (^) p 241 — russicus Mars. = comptusWW^. var. ; Schmidt [^] p 297. Eretmotes cfr. Satrapes. Gnathoncus nannetensis Mars. = rotundatus Kug. ; Schmidt (**) p 317. Hetaerixis Merklin. Constantinopel ; Schmidt (^) p 238 — mm? \ AlberS {}) p 233 — rugosus h^. var. exsisus n. Macassar; SchaufuSS p 185 — perforatus n. Sumatra ; Ritsema (^'^j p 41 Fig. Homolamprima n. prope i?%s«o?ioi'<<5 p 199, crenulata n. Clarence River p 200; Mac- leay (-) . Lamprima cuprea Latr. = aurata Latr. Q. , viridis Er. non = aenea F. var. p 131, cultridens Burm. = ? varians Germ, p 133 ; nigricollis Hope und sumptiiosa Ho]De = ilf/carr/i Reiche var. p 135, il/?(?;'cam' Reiche = laiipemiis Hope p 471, fratellus n. Fig. Luzon, Manilla p 472 ; Leuthner. Platycerus californicus Vi. Californien ; Casey (^) p 331. Rhyssonoius laticeps n. Neu-HoUand ; Macleay (^) p 201. Familie Passalidae. Lucas (2) beschreibt die Larve und Puppe von Passalus transversus Dalm. Enocnemts Geloti n. Macassar ; SchaufuSS p 187. Leptaulax macassariensis n. p 186; ur.mlus n. Macassar p 187; SchaufUSS. Pertinax aeqitatorialis n. Ecuador; KirSCh (^j p 208. Petrejus alticola n. Ecuador; KirSCh (^j p 209. Popilius depressicornis n. Ecuador; Kirsch (^) p 208. Familie Scarabaeidae. Subfamilie Scarabaeidae laparosticti (sensu Leconte). Kuthy (^) bespricht den Nutzen der coprophagen Lamellicornier durch Lockerung und Aufwühlung des Bodens. Poujade (^) bespricht die Lebensweise von ^^feMe/^ws semipunciaius. Lucas (^) beschreibt die Puppe von Heliocopris buceplmlus F. Gozis {}] bespricht ein abnormes Exemplar von Aphodius erraUcus. Derselbe er- örtert die Unterschiedevon Aphodius foetens F. und j^mefonW L. und gibt eine Be- stimmungstabelle der schwierig zu unterscheidenden Arten: Aphod. immundus Creutz., sordidus F., ntfusM.o\\., nitidulus F. und lugens Cr. Fowler (^) bespricht die Unterschiede von Aphodius foetens nnä ßmetarius nach Gozis. Preudhomme (2) beginnt eine Bearbeitung der Coprinen von Hainaut und be- handelt vorläufig 27 sp. Die Unterschiede von Aphoditis prodromus und punctato- sulcatus werden eingehend erörtert und illustrirt. Berthelin constatirt die nördliche Verbreitung des Ateuchis laticollis L. bis in das Dep. Yonne. Heyden i^) ver- zeichnet Aphodius haemorrhoidalis L. var. sanguinolentus Herbst von Nikolajevsk als neu für das Amurgebiet. Blanchard {^) bespricht Copris procidua Say und die nordamericanischen Choeridium und liefert eine Revision mit Bestimmungstabellen der nordamericanischen Canthon 15 und Phanaexis 7. Hortl (^) beschreibt 2 nord- americanische Arten der bisher nur aus dem östlichen Europa bekannten Gattung Glaresis. Dohm (3) p 62 bespricht Canthon violaceus Ol. von Haiti. Biackburn & Sharp ('^) verzeichnen von den Hawaii-Inseln Aphodius 1, Ataenius 3, Saprosites 1, darunter keine der Inselgruppe eigen thümliche Art. Aphodius Solskgi EsiY . var. Nikolajevsk, Blagowestschensk ; Heyden (^) p 299, 301. Bolboceras midticostatus n. Neu-Guinea, Fly River, Äjrma?2?'c?mZ^?S'ay« Lec, verticinus Beauv. = rubricollis Herbst, protervus Lec. = semicinctus Rand., molestus Lec. = nigricans Germ., violaceipennis Cand. = atripennis Horn, phoenicopterus Germ. = apicatus Say p 14; LeCOnte (^) — humeralis K.axsoh zw Eopenthes ] Sharp (^\) p 240. Eniconyx n. Plastocerini, prope Aph-icus, verwandt mit Cardiophorus p 51, pullatus n. Arizona, gracilis n. Neu-Mexico p 52 ; Horn ('^). Eopenthes n. verwandt mit Elater und Megapenthes, basalis n. Oahu p 153, obscuriis n. Fig., f/eÄ27(s n. ibid. p 154; Sharp (^'j — Konae n. Hawaii, satelles n. Launai, ambiguiis n. Oahu p 155; Blackburn; cfr. Elater. Esthesopus praeditus n. Tennessee, Texas, /»(//•c?^« n. Camp Grant, Arizona p 42, dis- persus n. Texas, Utah, Arizona, Süd- Californien, pusio n. Florida p 43 ; Horn ('-). Horistonotus vulneratus n., pullatus n. Arizona p 35, basalis n. Queens Valley, Cali- fornien p 36, gracilis n. West-Nevada p 39, mitis n. Utah p 40 ; Horn ('■^j. Ischiodontus approximatus Cand. non = sellatus Say; Horn (^j p 50. Itodacnus n. verwandt mit Corymbites, gracilis n. Fig. Oahu; Sharp {^^) p 241; cfr. Corymbitcs. Leptoschema n. verwandt mit Limonius und Athous, ausgezeichnet durch doppelte 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 279 Prosternalnähte. Typ. Agriotes protr actus Hörn. ; ferner hierher Athous hicolor Lee. und discalceatus Say ; Horn l^) p 50. Lepturoides miniatus n. Japan; Candeze (^) p 121. Ludius pinguis n. Portland, Oregon p 47, fuscus Gast. = attenuatus Say, coracimis Germ. = abrvptus Say p 49; Horn (2). Megapeni/ies Siurmii hec. = granulosusMelsh., yiigriventris'o.. Californien, Washington Territory, caprellahec. = stigmosus Lee., lepidus n. Californien; Leconte (') p 7. Melantho Raffraiji n. Madagascar; Fairmaire (*) p 227. Monocrepidhis ßnitimiis Casey = auritus Herbst; Horn (^o) p 120. Oxynopterus Harmseni u. Sumatra, Battaks ; Candeze (') p 120. Pyrapractus n. prope Pyrophorus, sycopJianta n. Madagascar; Fairmaire (•) p 228. Subfamilie Eucnemini. Fauvel [^^) revidirt die Eucnemiden der Fauna gallo-rhenana : Cerophytum 1, Midasis 1, Tharops 2, Eucnemis 1, Dromaeolus 1, Dierhagus 5, Farsus 1, Hypo- coelus 1, Anelastes 1, Xylophilus 2. Anelastes harharus Luc. (neu für Frankreich) und Hypocoelus proceridus Mannh. sind abgebildet. Blackburn & Sharp (•^) beschreiben 5 den Hawaii-Inseln eigenthümliche Fornax. Dirrhagus Heydeni Kr. = pyrenaetis Bonv. ; FaUVel [^^) p 339. Fornax Bonvotdoirii yx. Fig. Oahu, Maui ; Sharp (^^) p 151 — scidpturatus n. Oahu, Waianae Mountains p 151, obtusus n., longicornis n. Maui, Haleakala, parallelus n. Oahu, Konahuanui p 152; Blackburn. Phlegon Koenigi n. Wernoje, Sibirien; Reitter (^^) p 379. Familie Throscidae. Fauvel (^^) revidirt die Throsciden der Fauna gallo-rhenana: Throscus 7, 1 n., Drapetes 1 und macht auf die Geschlechtsunterschiede einzelner Arten [Throscus Rotigeti, obtusus, Duvali) aufmerksam. Heyden C*) verzeichnet Throscus Orientalis Bonv. von Chabarofka als neu für das Amurgebiet. Horn {^) revidirt die nordamericanischen Throsciden : Throscus 13, 6n., Pacto- pus 1, Drapetes 4. Pactopus Hör ni w'ivd abgebildet. Dohrn ('^j erwähnt Drapetes tripartitus und quadrisignatus Bonv. vom oberen Amazonas. Throscus [Trixagus] aurociliatus n. Nieder-Österreich, Mödling ; Reitter (^) p 314 — = ? Duvali Bonv. p 334, similis Baudi = carinifrons Bonv., gracilis Woll. = elate- roides Heer, Eougeti n. Cöte-d'Or, St. Leger p 332; Fauvel {^^] — invisus n. New- York p 201, convergens n. Nord-Georgien, pugnax n. Florida p 202, mendax n. Sacramento Valley, Californien p 203, sejunctus n. Mojave Region, Californien p 204, dehilis n. Oregon, Washington Territory p 205 ; Horn (*). Familie Rhipiceridae. Wenzel bespricht die Lebensweise von Sandalus petrophya Knoch. Callirrhipis angustior n. Sumatra oder Borneo; Fairmaire (^^) p 106. Cebriorrhipis basipennis n. Sumatra oder Borneo; Fairmaire (^-'') p 105 — pxcei- ventrisn. Cochinchina ; Fairmaire (^^j p 155. 280 Artliropoda. Familie Dascillidae. Cyphon pallicolor n. Baie Orange, Feuerland; Fairmaire [~) p 47. Euscaphtinis n. Eucinetini p 328, saltator n. Fig. Californien ; Casey (^) p 329. Ptenus suturalis White = Atopida Brouni Sharp, jnlosus White zu den Anobiiden ge- hörig; Sharp (9) p 299. Familie Malaeodermata. Subfamilie Ly|cini. Bourgeois (^) bearbeitet die Lycini der Fauna gallo-rhenana : Dyctiopterus 6, Lygistopterus 1 . BourgGOis (^) bespricht Macrolycns ßabellatus Motsch. , Lipernes perspectus Waterh., Lycus [Lycostomus] ferrugineusY., suturalis 'RtdAh . , modestus YfaiQvh.., ambiguus Waterh., nigripes F., Davidis Fairm., thoracicus Waterh., Ditoneces sobrinus Waterh., Xylobanus fastidiosus Waterh., Conderis velutinus Motsch. Horn (^) p 148-149 bespricht Lycus Fernandezi Dug. , Lycostomus loripes Chevr., sanguineus Gorh., Lygistopterus laetus Gorh. und Lycaina marginata Gerh. Caenia Dohrni, Coquereli^ Kliigi, angulata^ torquata und Baillyi wahrscheinlich zu Cautires; Fairmaire (^) p 229. Calopteron biplectile n. Argentina, Missionsgebiet; Berg (^) p 228 — opulentumn. Ecuador p 77, pretiosum n. Neu-Granada p 78; Bourgeois (^) — semiflavum Chevr. und albicolle Chevr. in ein anderes gen. gehörig; Bourgeois C^) p 148. Cautires holomelas n. Madagascar ; Fairmaire (^) p 229. Cerceros pectinicornis Kr. = Celetes pectinifer Kiesw. = [Lygistopterus) Macrolycus flabellatus Motsch.; Bourgeois (') p 71. Coloberos n. prope Pyropterus p 82, tenellus n. Himalaya, Darjeeling p 83; Bour- geois (1) Conderis velutinus Motsch. non = signicolUs Kirsch., Waterhousei n. Himalaya, Dar- jeeling; Bourgeois (i) p 81. Homalisus blattinus Perty zu Lucio p 131, scissiventris Perty = Hyas denticornis Germ, p 134; Oüvier (»j. Lycaina discoidalis n. Texas; Horn [^') p 150. Lycostomus patruelis Bourg. = [Lycus) suturalis Redtb. var. p 73, debilis Waterh. = Lycus [Porrostoma, Lycostomus) Davidis Fairm. p 76 ; Bourgeois (^). Lycus [Lycostomus) honestus nom. n, für [Lycostomus) modestus Waterh. non Kiesw., elongatulus n. Birmania p 73, restitutus u. [ambiguus WaiiQxh. Q) Nord- Indien p 75, [Thoracocalo7i) umbraticeps n. Neu-Granada p 77; Bourgeois ('). Lygistopterus missionum n. Argentina, Missionsgebiet; Berg ("^j p 226. Lyponia himalejica n. Himalaya, Darjeeling; Bourgeois (^) p 79. Plateros correntinus n. Argentina, Corrientes; Berg (^) p 229. Trichalus Olivieri n. p 83, pygoxanthus n. p 84 Molukken ; Bourgeois (^j p 84. Xylobanus alveolus n., ajjj^roximans n. Himalaya; Bourgeois (^) p 80. Subfamilie L a m p y r i n i . Olivier (^) erörtert nach Typen die Synonymie der von Olivier dem Älteren in der Encyclopedie methodique 1792 beschriebenen Lampyrinen. Olivier (^) revidirt die europäischen und mediterranen Arten. Er beschreibt Trib. Lampyrini: Pelania 2, Lamjjyris 25, 5 n., davon 8 zum subg. Nyctophila gehörig, Lamprohizah, In., Phosphaenopterus \\ Tvihus Phosphaenini : Phosphaenus 8. Hexapoda. YIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 281 2 In.; Tribus Luciolini: Lampyroidea 6, 1 n., Luciola A, In. 13 der bisher beschriebenen Arten waren dem Verfasser unbekannt geblieben. Abgebildet werden : Pelania mauritanica und angustipennis (J^, PhosjjAaenopterus Metzneri, Phosphaenus Rougeti Q , Lampyroidea nigrescens (^ sowie characteristische Details zahlreicher anderer Arten. Olivier {^) liefert Ergänzungen zur vorigen Arbeit und bespricht namentlich Nyctophila molesta Duv., Lampyris attenuata Fairm. und Phosphaenus Rougeti E. Ol. Bourgeois (^) bearbeitet die Lampyrinen der Fauna gallo-rhenana : Pelania 1, hampyris 4, Lampt-ohiza 4, Phosphaenihs 1, Luciola 1. Verf. gibt auch eine Bestimmungstabelle der Larven nach den Gattungen. Olivier (^) bespricht die Gattungen Vesta, Pyrocoelia, Nyctophila, Lampyroidea, Luciola, Colophotia, ferner Vesta MenetriesiM.oi'&c\x., proxima Gorh., «ren« Gorh., Lucidota Banoni GSi^t., atra Ol., Photinus coruscus Jj., limicollis Gorh., Sturmi Gorh., impressicollis'M.oiiQh.., piyralis Ij., ardens hec, lo7igip ennis Motsch., vittiger Gyllh., i^anf/wsMotsch., Cratomo?-phus insignis Gorh.. , bifenestratus GoYh., Aspido- soma macidatum OL, laterale F., hesperum L., aelianum Gorh., hilineatum Gorh., Lamprophorus nejJalensisl^O]}^, i5oy e^ Motsch . , Diaphanes indicus 'M.oi'&ch., Pyro- coelia foochoioensis Gorh., terminata Gorh., bicolor F., Lamjjyris attenuata Fairm., membranacea Motsch., Raymondi Muls., Lareyniei Duv., Nyctophila molesta Duv., Lampyroidea maculithorax Gemm. , Curtos mongolicus Motsch., Luciola japonica Thunbg. , pallescens Gorh., testacea Motsch., carinata Gorh., chinensis L., picticolUs Kiesw., discicollis Gast., coxalis OL, lusitanica Cha.Yp . , australisF., zan- zibarica Ol., circumdata Motsch. , Colophotia praeustata Esch. , Photuris pennsyhanica Deg., collaris Goxh., lividipemiis Motsch. , lucidicollis Govh. und tristissima Gorh. Sang fand Luciola italica bei Darlington in England. Bourgeois {^) beschreibt das 5 von Lampyris depressiuscida Motsch., Oiivier (^) p 9 das Q von Lampyris attenuata Fairm. aus Tunis. Olivier (■') characterisirt die Gattungen Lamprocera, Lucio, Hyas, Tenasjns, Cladodes, Phaenolis, Calyptocephalus , Megalophthalmus und Psiloclades und bespricht : Lamprocera Latreillei Kivhj , ßavofasciata Blanch. , tristior Germ., Lucio abdominalis Gast., brunnea E. Ol., picta Gorh., blattina Pevty, Hyas denticornis Gei'va., ßabellata F ., Tenaspis angularis Goxh. , semifusca Govh.., Clado- des ater Sol., Demoidini Motsch., ßavicornis Motsch., stillatus Gorh., ventralis Gorh., nigricollis Gorh., Megalophthalmus collaris Guer., costatus Gast., marginata Guer., Psilocladus miltoderus Blanch. Abgebildet werden 1 Lucio, 1 Hyas, .5 Cla- dodes, 1 Calyptocephalus Vi\s.dL 'd Psilocladus . FairmairO (^) beschreibt Xwc/o/a marfß- gascariensis Guer., Goudoti Gast, und cribricollis Küst. Horn (•") gibt eine Über- sicht der nordamericanischen Zarrhipis 4, 1 n. Gorham [^) liefert ein Supplement zu seiner Bearbeitung der Lampyrinen von Geutral- America und bespricht Pho- turis hectica F. von Panama, frontalis Lee. simplex Gorh. und Phengodes bifjia- culata Gorh., 2 Photuris neu. Olivier ('-') verzeichnet die von van Volxem in Bra- silien und in den La Plata-Staaten gesammelten Arten : Lamprocera 2, Hyasl, Cladodes i, Liccidota6, 2n., Photinus b, in., Cratotnorphus 3, Aspidosomah, 2n., Amythetes 2, Photuris 5, In. Verf. gibt Noten zu Lucidota appendiculata Germ., cincta Motsch. und Cratomorphus subcostatus Guer. Aspidosoma laetum n. Argentina p 230, ai-gutum n. Gorrientes p 231 ; Berg (^) — jwlyzomim Chevr. = ignituni L. var. p 342 ; Olivier (^) — aegrotum Gorh. var. Rio de Janeiro, fusiforme n. Buenos Aires p 24, rotundata n. Santa Gruz p 25; Olivier (')• Calyptocephalus gratiosus n. Fig., mimicus n. Amazonas; Olivier (^) p 143. Cladodes htmeralis n. Fig., Delalandei n. p 139, Bourgeoisi n. Fig., [Ledocas) paral- lelus n. Fig. p 140, [Dodacles] elegans u. Fig. p 141 Brasilien, attenuatus n. 282 Arthropoda. Montevideo, Rio de Janeiro p 141; Olivier '^) — atienuatus n. Montevideo; Olivier (ß) p 333. Colophotiadivesn. Manilla ; Olivier i^) p 367. Diaphanes humilis Tx. Fig. Sumatra, Mt. Singhalang; Olivier (^) p 346. Dodacles n. subg. für Cladodes nigricollis Gorli., plumosus Gorh. und 2 n. sp. ; Olivier (3) p 136. Drüolampadius Gorh. = Psilocladus Blanch. ; Olivier [^) p 147. Dryptelytra n. subg. für Cladodes cayennensis Gast, und calocenis Kirsch, mit pfriemenförmigen Flügeldecken ; Olivier (-^j p 138. Hyas quadrhnaculata n. Santa Catbarina, Brasilien, luchiosa n., afßicta n. Ecuador p 133, fallax n. Colombien, fasciata n. Amazonas p 134, angularis Gorh. zu Tenaspis Lec. p 135, 136 ; Oüvier [^). Lamprocera dihäa n. Cayenne p 127, brtmnea E. Ol. und picta Gorh. zu Lucio] Olivier \^) — tristior Gor\i. var. Rio de Janeiro; Olivier (^) p 22. Lawprohiza xqqXq pro Lamporrhiza \ Bourgeois (^) p 77 — Farinesi Villa = Mul- santi'Ki&hw. ; Olivier (^) p 3 — Paidinoi n. Fig. Portugal; Olivier C*) p 35 — Riversi n. Californien ; Leconte (^) p 20. Lamprophorns nitens n. Borneo, Sarawak p 344, minor n. Birmania, Minhla p 345 ; Olivier [^]. Lamprorrhiza cfr. Lamprohiza. Lampyris lusi (anica Mot&ch. non Charp. = Baymotuli Mnls. p 350, dylnatia Gast. = Zefikeri Germ, p 351, longicollis n. Fig. Abyssinien, Bogos p 351 ; Olivier [^) — insignis AnQ.Qy (^ = [Nyctophila] libatü Cast. p 11, i7icisa n. Tekke Turcmenien p 14, Heydeni n. Fig. Balearen, Miramar p 16, Bonvouloiri Duv. = [Nyctophila] üeichei DuY. var., Reichei Yav. hispanica n. Spanien, Süd-Frankreich p 17, algerica Ancey = soror Schaum, cincia Motsch. = ? so7-or Schaum p 24, mucronata n. Fig. Alger, Sidi Ferruch p 25, larbara n. Barbaria p 30, mukibilis n. Sicilien, Mado- nie, Algier, Bona p 31 ; Olivier (") — thoracica Motsch. und obscurella Motsch = noctiluca L. p 74, algerica Ancey und ? cincta Motsch. = lusitanica Motsch. p 75 ; Bourgeois [^j — antica Boisd. non = madagascariensis Guör.; Fairmaire (') p 230. Lampyroidea nigrescens n. Syrien ; Olivior C*) p 46 Fig. Ledocas n. subg. für Cladodes paralleliis n. mit langen parallelen Flügeldecken; Oli- vier (3) p 136. Lucidota Boliviana Gorh. = Banotii Gast. var. ; Olivier C') — apjjroximans n. Saö Joao d'El Key p 22, perpusilla n., parvicollis n. Rio de Janeiro p 23 ; Olivier (^). Lucio rußventris n. Patria ?, splendeiis n. Fig. Paraguay, Brasilien p 129, melanura n. Amazonas p 130, dimidiata n. Peru, Amazonas p 131, obscura n. Neu-Granada p 132; Olivier (3). Luciola vitticollis Fairm. non = vitticollis Kiesw., costipennis Fairm. non = costipemiis Gorh.; Olivier (^) — ludfera Reiche, macuUthorax Gemming., dispar Fairm.; graeca Gast, zu Lampyroidea p 46, \1 , judaica n. Fig. Syrien p 48, suturalis Motsch. - italicah. var. p 49, obtusa7igula Motsch. = ? italica var. minuta Motsch. p 30, caucasica Motsch. = mingrelica'Men. var., co^fom Motsch. = hisitanica Char^p . p 50; Olivier (") — hamulata n. Borneo, Sarawak p 357, Doriae n. Ceylon, Point de Galle p 358, vespertina F. = chinensis L., cingulata n. Fig. Ceylon, Point de Galle p 359, tarsctlis n. Fig. Neu-Guinea, Fly River p 360, lusitanica F. var. erythrocephala n. Italien, Sesto p 362, anthracina n. Neu-Guinea, Yule-Isl. p 363, microthorax n. Fig. Neu-Guinea, Hatam, Monte Arfak p 364, antennata n. Fig. Neu-Guinea, Fly River, fenuicomis n. Fig. Celebes, Kandari p 365, Gestroi u. Cap York, Somerset p 366; Olivier (**) — maculiscutum n. p 2 3 1 , /?//i'a^o n . , vitticollis n. p 232, transversicollis n., costipennis n. Madagascar p 233; Fair- maire M. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 283 Megalophthalmus obsoletus Blancli. = costatus Blanch. p 145, obscurus n. Brasilien, decurus n. Amazonas, Cavallo-Coclia p 146, spilocerus n. Amazonasp 147; Oli- vier (3). Microphotiis ancfushis u. Hillsboro, Florida; LeCOnte (^) p 20. Nyctocrepis lamelUcornis Motsch. zu Cladodes: Olivior ("^j p 139. Nyctophila n. snbg. für die Lampi/?-isa,vten, deren 7. Ventralsegment sich in einen Lappen fortsetzt. Hierher Lampyris libani Gast., molesta Duv., maculicollis Fairm., caucasica Motsch., syriaca Baiidi und Reichet Duv. ; Olivier (^) p S. Pelania scutellata Fairm. = mauritanica L., [Lampyris) obtusa Fairm. = mauritanica L. var. ; Olivier (^) p 6. Phaenolis Gorhami u., stertialis n. Amazonas; Olivier (^) p 142. Phaenopyrus n. prope Diaphanes , hirmanensis n. Fig. Birmania, Minhla ; Olivier [^) p 347. Phengodes minor var. ? Guatemala; Gorham (^j p 277 — pallens n. Buenos Aires, Uruguay; Berg l^) p 232. Phos2)haenus hemiptencsYouxcY. var. contr actus n. Frankreich, _/?at'o«W?Pseudnosodermm aus dem Amurgebiet, welche faunistisch als einziger Repräsentant der nearctischen und neotropischen Zopherinen in der paläarctischen Region von großem Interesse ist. Heyden (^"j p 274 be- spricht Prosodes similis Ball. (^ und Q. von Kuldsha. SchaufuSS gibt eine Be- stimmungstabelle der ihm bekannten Toxicum 10, 8 n. G. Quedenfeldt (^) gibt aus Angola und dem Quangogebiet an: Macropoda In., Pedionomus 1, Himatismus 2, in., Psammodes 3, 2 n., Distrettis In., Sepidium 1 n., Opatrinus 1, Anomalipus 1, Opatrum 2, Anemia In., Ceropria 2, Alphitohius 1, Peltoides \, Toxicum 1, Endustomus In., Conophthahnusn,, In., Nyctobates 6, 3 n., Heterotarsus 1, Odon- topus 1, Chiroscelis 1, Prioscelis 1, Pycnocerus 1, Perichilus n., 1 n., Hoplonyx 6, 3 n., Gonocnemis 1, Eupezus i, 1 n., Paramarygmus n, 1 n., Sirongylium 7, 3 n., Aspidosternum 3, Praogena 9, 4 n., Dysgena 1 n. ; p 20 bespricht der Verf. die Mundtheile der Gattung Hoplonyx und einiger Amarygrainen. Hayward bespricht die Geschlechtsunterschiede von Belotherus bifuscus, Hamilton ('-) bespricht das Vorkommen von Dioedus pimctatus Lee. Champion setzt in seiner Bearbeitung der Tenebrioniden von Central-America die Subfam. Tenebrioninae bis zur Gruppe Hopatrides fort. Er fügt zu den 37 bereits aufgeführten Elaeodes weitere 15, 5 n. hinzu, ferner Gruppe Scaurides: Argoporis 7, 5 n., Amviophorus 1; Gruppe Eutelides : Diceroderes 1; Gruppe Te- nebrionides: Mitys n., 3 n., Oenopion n., 1 n., Centronopus 2, 1 n., Pyresn., 1 n., Rhinandrus 4, 1 n., Zophobas 10, 3 n., Tauroceras 1, Nyctobates 2, in., Nuptis 7, 6 n., Oeatus n., In., Hicetaonn., 1 n., St/ienoboea n. , In., Glyptotus 1 n., Isi- cerdes n., 2 n., Hesiodus n., 5 n., Ilus n., 1 n., Choaspes n., 2 n., Tenebrio l, Rhacius n., 2 n., Eupsophus In.; Gruppe Pedinides : Hopatrinus 2, Pedonoeces l, Blapstinus 21, 18 n., Notibius 2 n., Conibius In., C/'/;>?-ojöÄefe. Reiche ; Bedel ^) p 87 — Maeander n. p 291, [Di- neria) graciUcollis n. p 292 Namagan ; Kraatz (i"). Blnpstinus mexicanus n. Mexico p 124, tibialis n. Fig. Guatemala. Nicaragua p 125, interstitialis n. [pnnctulatus Duv. nec Sol.) ganz Central-America, Cuba, longicollis n. Guatemala, Nicaragua p 126, errabundus n. Mexico, Nicaragua, Panama, insu- laris n. Panama, umbrosiis n. Mexico p 127, Palmerin., substriaius n. ibid., 5?/- gueti n. Fig. Panama, Colombia, Guiana, egenus n. Guatemala, Nicaragua, Pa- nama, Colombia, intermedius n. Mexico, Guatemala, Nicaragua, szdcipemns n. Fig. Guatemala p 129, nitidus n. Fig., longipennis n. Mexico, atratus n. Fig. Mexico, Guatemala, Nicaragua, Panama, emmenastoides n. Fig. Mexico, Guatemala p 131, ohliteratiis n. Panama p 132 ; Champion — pimalis Casey = pulveruleiitns Mannh.; Horn (lö) p 111. Brachyhelops n. prope Parahelops, Halmi u. Baie Orange, Sentry-Boxes, Feuerland ; Fairmaire (2) p 57, (i^j p 12. Brachyidijimaspericolle n. Sumatra oder Borneo ; Fairmaire (*^j p lo8. Callyntra Paulseni n. Chili, Quillota ; Fairmaire (^^j p 156. Centronopus exiensicollis Sol. = suppressus Say, grandicollis n. Mexico p 100 ; Cham- pion. Ceropria anthracina Luc var.? Quango; G. Quedenfeldt (') p 11. Choaspes n. prope Ilus, purpureus n. Fig. Brit. Honduras, Guatemala, Nicaragua, Panama, anguUcollis^s.. Fig. Nicaragua; Champion p 119. Chremolamus villosipes m. Madagascar ; Fairmaire (') p 236. Conibius brumipes n. Fig. Mexico, Guatemala; Champion p 133. Conoccus n. Gnathosiini, prope Ercmoecus et Trimytis, ovipennis n. Fig. Texas; Horn (6) p 159. Conophthahnus u. Eutelüni, ausgezeichnet durch stark vorspringende Augen p 13, setuiosus n, Fig. Quango p 14; G. Quedenfeldt ^). 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 291 Distretus .Mec/iotvi n. Quango ; G. Quedenfeldt (') p 6 Fig. Dysffena fuligüiosa \i. Quango; G. Quedenfeldt (*) p 33. Elneodes arcuata Casey = extricata Say ; Hortl ('"^j p 111 — Sollen n. Fig. Uaevigata Sol. var. A = ? Blaps celsa Say) Mexico, Sallaein. Fig. ibid. p 89, coarctata n., Hoegei n. Fig. p 91. sulcata n., stolida n. p 92 ibid., seriata Lee. = Goryi Sol. p 93 ; Champion. Endnstomus hicaudatiis n. Quango; 6. Quedenfeldt (i) p 12 Fig. Eucyrtus punctatolineatus n., carbunculus n. Borneo oder Sumatra; Falrmaire (^^) p 109. Eupezus rußpes n. Quango; G. Quedenfeldt [^] p 24 Fig. Eupsophus Hornin. Mexico; Champion p 122. Eurymetopon piceum Casey, sculptile Casey = emarginatum Casey, carbonatum Casey = dubium Casey; Horn [^^) p HO. Exeresüis Bates = R/imandrus hec. p 101, /fl7?so?n" Bat. = Hhinandrus elongatus ^OTH ; Champion p 102. Gedeon = Pimelia sect. ; SenaC (^) p 9 — Borrei Haag = Pimelia parallela Sol. ; Senac (') p si. Glyptotm nitidus n. Mexico, Nicaragua; Champion p 113 Fig. Heledona hellenica n. Euböa; Reittor ('^) p 381. Helops grajus var. euboeicus n. Euböa, Creta, Steveni Kryn. = coenileus Rossi var., basiventris n. {Steveni Küst., All. non Kryn.) Euböa p 382, ejusd. var. carini- mentum n. Syrien p 383 ; Reitter C^) — strigicollis n. Süd-Californien ; Hom (^) p 161 — undulatus Lec. = americanus Palis.; Hom (^*') p 90 — oblongitisculus Blanch. wahrscheinlich zu Hydromedion; Fairmaire (^) p 53. Hemicera alternicolor n. Borneo oder Sumatra; Fairmaire \}^) p 110. Hesiodiis n. prope Isicerdes et Glyptotus ; hierher wahrscheinlich Haplandrus ater Lee, longitarsis n. Fig. Mexico, Nicaragua p 115, sordidus n. Mexico, Brasilien, Jaji- soni n. Nicaragua, cojispectus n. Panama, h-asiliensis n. Ega, Brasilien, debilis n. Fig. Guatemala p 117; Champion. Hicetaon n. verwandt mit Oeatus und Iphthimus p 111, frontalis n. Fig. Mexico, Brit. Hondurasp 112; Champion. Himatismns mgrosrilcatus n. Quango; G. Quodonfeldt i}) p 3. Holaniara picescens n. Borneo oder Sumatra; Fairmaire i}^] p 109. Hoplonyx anthracinus n. p 21, brunneus n. p 22, ovipennis n. Fig. p 23 QuangO ; G. Quedenfeldt ['). Hydromedion distinguendum n. Baie Orange, Feuerland; Fairmaire (^) p 53 — [My- lops) miomocerum n. Feuerland; Fairmaire (^") p 11. Ulis n. prope Haplandrus et Isicerdes i^ 117, apicicornis n. Fig. Costa Rica p 118; Champion. Isicerdes n. prope Glyptotus p 113, occultus n. Fig. Mexico, Brit. Honduras, Guate- mala, Panama, funebris n. Guatemala p 114, attenuatus n, Colombia p 115; Champion. Isocerus purpurascens Herbst = ^. ferrxiginexis F. Q; Kraatz (^^) p 16. Laena longicornis Weise = piligera Weise p 400, alternata n. Türkei, Oertzeni n. Creta, libanotica n. Libanon p 401, parvtda n. Haifa, Libanon, Schwärzt n. Corfu p 402; Reitter (i^). Lasiostola hirtipes n. Namagan ; Kraatz C'') p 293. Macropnda maculicollis n. Malange ; G. Quedenfeldt (^) p 2 ; cfr. Adesmia. Melambius aspero-costatus Fairm. = TeintitrierilsivX^. & God. ; Bodcl (*) p 87. Melanolophus ater n. Fig. Kilimanjaro ; WaterhOUSO (^) p 234. Milaris cayennensis Motsch. = ? Nyetobates gigas L. var. ; Champion p 106. 19* 292 Arthropoda. Mitys n. verwandt mit Chileone, Hypaidax und Hipalmus p 98, inflatus n. Fig., lae- vis n. Fig., opacns n. Fig. Mexico p 99; Champion. Mylops Fairm. = Hydromedion Waterli. ; Fairmaire ('■^) p 50 — sparsiitus n. Süd- Georgien; Müller (^) p 418. Notibiiis rugipes n., affinis n. Fig. Mexico p 132 ; Champion. Nuptis cornutus n. Guatemala, Nicaragua, Panama, Colombia, Brasilien p 108, w- qiiinattis n. Fig. Guatemala, cah'ginosus n. Fig. Mexico p 109, validus n. Fig., tenebrosus n. Fig. Mexico, Guatemala, corticalis n. Nicaragua, Panama ]3 110; Champion. Nyctobates [Hemerobates] iphthimoides n. p 15, brevitarsis n., bifasciatus n. Fig. p 16 Quango; 6. Quedenfeldt (^) — procems n. Fig. Mexico, Brit. Honduras, Guate- mala, Colombia; Champion p 507. Oeatus n. verwandt mit Amenophis und Deriles, Chevrolati n. Fig. Mexico, Brit. Hon- duras, Guatemala, Costa Rica; Champion p Hl. Oenopion n. verwandt mit Mitys, Hipalmus und Coelocnemis p 98, gibbosus n. Fig. Mexico p 99; Champion. Onymacrys n. subg. für Adesmia candidipennis Breme, marginipennis Breme, bicolor Haag, Langi Guer., tmguicularis Haag, 7-ugaiipennis Haag, Paifa Haag, mtdtistriaia Haag aus Süd- und West-Africa; Allard (^j p 157. Opatrinns alatus n. Cap Palmas, Isle de Prince ; 6. Quedenfeldt [^] p 8. Pandarinus rußcornis Reitt. = Colpotus pectoralis Muls. var. ; Reitter (^) p 82. Parahelops angulicolUs n. Canal du Beagle, Baie du Naturaliste, Isle Hosta, Cap Hörn, Feuerland; Fairmaire (^j p 56, (^^j p 11. Paramarygnms n. zwischen Amarygmus und Nesioticus p 25, nigroaeneus n. Quango; 6. Quedenfeldt (i) p 26. Penichrus n. prope Ulus p 134, blapstinoides n. Fig. Panama p 135; Champion. Penthicus vulneratus n, Namagan; Kraatz (^') p 293. Perichilus n. Cnodalini, prope Titaena p 18, brevicornis n. Fig. Quango p 19; G. Quedenfeldt ('). Perimylops n. Helopini?, ohne nähere Angabe der Verwandtschaft, antarcticus n. Süd- Georgien; Müller (1) p 419. P/ialeria /imiisphaerica K.nst. = pallens l^aiv . , nigriceps lAw\^. - cadaverina F . , bima- ciilata Herbst = cadaverina F. var., cadaverina Muls., Küst., Baudi, non F. = dorsi- gera F., ÄmÄa/a Baudi = dorsigera F. var. ; Fauvol (*) p 320. Phrynocolus plicatus Gerst. zu Amianius Fähr., placidus n. Goudokoro; KolbO (^) p 112. Physosterna laevis n. N'Gami, punctiger n. Angola; Allard (3) p39. Pimelia claudia Buq. Tazmalt im Djurjura; Ch. Oberthür — oblong a xi. Marocco, Mogador p 81, Brisouti n. Algier, Kreider, Geryville, Bou-Saada ; Senao (-) p 82 — [Podhomala] bicostata n. Sibirien, Ost-Rußland p3, cristata Sen. = [Pod- hoynala) Fausti Kr. p 6, vestita Sol. = [Piesierotarsa) velutina Klg. p 9, gigantea Fisch, var. Zoubkofß n. Turkestan p 22, angulata F. var. altemata n. Ägypten, ejusd. var. syriaca n. Syrien, Griechenland, Ägypten p 24, sericea Sol. nee Ol. = permixta Sen. = Latreillei ^o\. var. p 25, nilotica n. Ägypten p 27, semihispida Fairm. = retrospina Luc. p29, consobrina Luc = ? angulosa Ol. var. p37, tenui- cornis Sol. var. tripolitana n. Tripolis p 3 7, maroccana Fairm. = cordata Kr. p 44, convexicollis Sen. = inexpectata Sen. Q, Dej eani Qol. ex p. = interstitialis Sol. p 52, inflata Herbst var. vestita n. p 54, amicta Baudi = latipes Sol. p 56, hitertuberculata Luc. = Lucasi Reiche = Doumeti Sen. = granulata Sol. p 58, Prophetei n. Algier, Tiaret p 63, subquadrata Sol. = depressa Sol. var., aggregata Klug = miliaris Klug = asperata Klug = sericea Ol., balearica Sol. = sericea Ol. var. p 80, torquata Baudi n., tuberculata Baudi nee Men. = atamites Baudi var. 8. Hexapoda. YIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 293 p 89, oxysterna Sol. = cephalotes VaW. p 91, cephalotes Pall. var. Menetriesi n. Turcomanien p 93, Gestroi n. Persien p 94, persica Fald. = dubia Fald. var. p 100; Senac [^). Platydema parmdum Casey = excavatum Say, opaculum Casey = ruficorne Sturm var. anale Haiti. ; Horn ('°) p Hl — ■ obscurum n. Oahu ; Sharp (^^) p 166. Porphyrhyba Uaffrayi n. p 235, chalybeata n. p 236 = Raffrayi p 242 ; FairmairG (^). Praogena aurichalcea n. p 30, gracilis n. p 31, aeneola n. p 32, subovaia n. Fig. p 33 Quango; 6. Quedenfeldt (^). Proderops Fairm. = Phinandrus hec. p 101, f oi'aminosus Fnirm. = Rhin. elongatus Horn p 102; Champion. Prosodes consanguineus n. Astrabad ; Ailard (*) p ISO — Ballionisn. [IticidaKr. non Ball.) Samarkand, alaiensis n. Alaip2S8, nitida n. p 289, rugosicollis n. p 290 Namagan; Kraatz (i^). Psammodes expletus n. p 4, propinquus n. p 5 Quango; 6. Quedenfeldt (^) . Pseudnosoderma n. prope Nosoderma , Fühler 12gliedrig, das 12. Glied im 11. ein- geschlossen p 305, amuretise n. Fig. Chabarofka, Nikolajefsk p 306 ; Heyden {^). Pyres n. prope Centronopus p 100, metallictis n. Fig. Nicaragua, Batesi rx. Colombia, Bogota p 101 ; Champion. Phacius n. prope Calcar, sidcatuhis u. Fig. Mexico, Guatemala, Nicaragua, Cuba, Süd-America, quadricollis u. Fig. Brit. Honduras, Guatemala, Colombia p 121; Champion. P/iinandrus sublaevis n. Arizona; Horn C") p 160 — obsoletus u. Mexico; Champion p 102 Fig. Scaiirm siriatus var. sardotis n. Sardinien; Costa (^) p 240. Sciophagus n. für Heterophaya pandanicola Fairm. ; Sharp (^') p 167. Scotobaemis Lec. = Centronopxis Sol. ; Champion p 99. Sepidium angolense n. Quango; 6. Quedenfeldt (^) p 7 Fig. Sthenoboea n. prope Oeatus, hierher Tphthimus utididatus Chew. p 112, apicalis n. Fig. Mexico p 113 ; Champion. Stenocara spinifera Perch. und Herbsti Gemm. = longipes Ol., Fab?-icii8o\., laevicollis Sol. und coronifera Sol. Varietäten der longipes 0\., miliaris Er. = gracilipes Sol. p 119, Bonellii So\., dubia Haag Variettäten der morS<7/osff F. [variolosaF.), p 200, sexlineata Herbst = dentata F., acutata F. = ? Winthemi Sol. p 201, cavifrons Sol. = serrata F. p 203 ; Allard p : . ßtenoscapha n. prope Pygidiphorus^ spissicornis n. Madagascar; Fairmaire (^) p 235. Strongylium coerulescens u., marginipenne n. p 27, semiaenewn n. p 28 Quango; 6. Quedenfeldt (i;. Tagenia alternicostis n. Bogos^ Keren ; Marseul (^) p 147. Tenebrio variolosus F. vielleicht zu Oeatus n.; Champion p 111. Toxicum giganteum n. Java, gazellae n. Macassar, ejusd. var. obtusum n. ibid., nitidifrons lü. Caffraria p 201 , tenuiclavwn n. Old Calabar, opacumn. Caffraria, indicum n. Ostindien ;, elongatum n. Philippinen, diversepunctatimi n. Macassar p 202 ; Schaufuss. Trichoton lapidicola n. Nicaragua, Venezuela, curvipes n. Fig. Panama; Cham- pion p 136. Ulus hirsutus n. Fig. Mexico, Guatemala, Panama p 133, lineatulus n. Fig. Guate- mala p 134; Champion. Uroblaps Reitteri n. Leukoran, Turcmenien ; Allard (^) p 180. Zopherus granicollis u. Lower California ; Horn C') p 160. Zophobas pedestris n. Fig. Nicaragua p 103, signatus n. Fig. British Honduras, Nicaragua p 104, Kraatzi n. Guatemala p 105; Champion. 294 Arthropoda. Familie Cistelidae. Reitter (^) beschreibt das (J' von Cteniopus graecus Heyd. Blackburn & Sharp (11) verzeichnen von den Hawaii-Inseln Labetis 1 , Cistela 1 n. Blackburn be- schreibt das bisher unbekannte (^ von Labetis tibialis Waterh. Waterhouse (^) bildet T 158 Chromomaea picta Pasc. ab. Allecula cinnamomea n. p 35, Mechowi n. p 36 Quango ; 6. Quedenfeldt {^) . Cistela aereonitens n. Quango; 6. Quedenfeldt [^) p 37 — crassiconiis n. Oahu ; Sharp (11) p 168 Fig. Isomira bispilosa n. Oran ; DesbrOCherS p 99. Podonta daghestanica n. Caucasus, elongata Faust = morio Kiesw. ; Reitter (i^j p 383. Familie Lagriidae. Müller (*) p 418 stellt Mylops zu den Helopinen; cfr. Tenebrionidae. Familie Melandryidae. Fauvel (■^) bespricht PA^oeo^ry« rußpes, Vaudotieri, /uscaJjec., Serropalpus tenuis Hampe, Dircaea quadriguttata Payk., quadrimaculata 111. und Dolotarsus rußpes Duv. Dircaea F. = Serropalpus Hell.; Fauvel C-^) p 133 — quadrimaculata 111. und qua- driguttata Payk. zu Phloeotrya Steph.; Fauvel ('^) p 133 — Riversi n. Sylvania, Sonoma, Californien; Leconte (*) p 29. Dolotarsus rußpes Duv. = Xylita livida Sahlbg.; Fauvel (^) p 136. Phloeotrya [Dircaea) rußpes Steph. = Vaudoueri Muls. Q , rußpes Duv. = Xylita livida Sahlbg., StephensiTiuv. = Vaudoueri Q., [Serropalpus) ,. = tenebrosa Cas,t. var. ; Bedel (*) p 87 — diffinis Ah. = gilvipes Chevr.; Abeille [^] p 39 — Lameyi n. Boussada ; Marseul {^] p 147. Pyrota duhitahilis n. [vittigera Lee, rufipennis Chevr.) Rio Grande, Texas oder Mexico p 113, invita n. San Antonio, Texasp 114, lilineatan. Fig. Colorado, Arizona p 115; Horn {^). Tetraonyx rufus Dug. = fulvus Lee; Horn (^j p 108. Familie Oedemeridae. Ananca collaris n. Honolulu; Sharp (^i) p 169. Oedemera immunda n. Lenkoran , ruhricollis n. Adalia , Kleinasieu , rostralis n. Dhagestan; Reitter ('3) p 386. Familie Curculionidae. Nach Will besteht das Stridulaüonsorgan von Cryptorrhynchus laiKttU aus 2 Eeibflächeu am letzten Hinterleibssegment und 2 Reibleisten auf der Unterseite der Flügeldecken. Landois (-) macht auf bereits bekannte Stridulatiousorgane von Rüsselkäfern aufmerksam. Reitter ^) p 276 bespricht ein Exemplar von Rhytirrhinus deformis Reiche mit einem Facettenauge auf der linken Seite des Halsschildes. Biiddeberg beschreibt p 86 — 91 die Larve und Puppe von Mecinus pyraster, Ceuthorrhynchidius troglodyies F., Ajnon sedi Germ, und die Puppe von Apion immune Kirby und bespricht die Lebensweise dieser Arten. Rühl (■^) be- schreibt die Larven von Baris artemisiae Herbst, chlorisVz., jncinus Germ., lepidii Germ., T-albumh., cuprirostrisY., c^^r/s«??« Germ, und bespricht deren Lebens- weise und Nährpflanzen. Mil( beschreibt und illustrirt die Entwicklungsgeschichte und -Stadien des an Melilotus alba Blattgallen erzeugenden Tychius crassiroslris Kirsch. Bargag li (^) setzt seinen biologischen Catalog der Ehynchophoren von Europa bis Rhyncholus fort. Bede! f') gibt Notizen über die Lebensweise und die Nährpflanzen vieler Arten der von ihm behandelten Gruppen. Girard be- spricht schädliches Auftreten und Vertilgungsmittel von Otiorrhynchus ligustici, FallOU die Verwüstungen von Molytes germcmus in Carottenculturen, Nach Mar- Chal entwickelt sich Cleonus albidus F. in Atriplex rosea L. und Chenopodium album, Baris morio F. in Reseda luteola. Bargagli (2) bestätigt diese Angaben und gibt weitere biologische Notizen, andere Rüsselkäfer und deren Überwinte- rung betreffend. Nach BiiySSOn (*) p 40 lebt Phytonomus Kunzei wahrscheinlich an Heliosciadium nodiflorum. M. Quedenfeldt (^j zog 3Iagdalis asphaUina Boh. aus dürrem Ulmenreisig. Abeille (") p 161 gibt Plantago psyllium als Nähr- pflanze von Gymnetron simum Muls. an. Birö {^) macht Mittheilungen über das Auftreten von Calandra granaria und gibt Mittel zur Vertilgung derselben an. *Roster bespricht die Lebensweise von Rhynchites betuleti. AnonymuS (') spricht über Züchtung von Malven-fressenden Apionen. Harrington (2) liefert Belege für die liguivore Lebensweise mancher Curculioniden. Als Feind der Erdbeeren in Nord- America bespricht Wood (2) Barypeithes brunnipes. Bowditch bespricht die Lebensweise von Magdahs olyra Herbst. Roelofs bespricht 2 auf tropischen Orchideen (Gattung Cattleya) in London aufgefundene Arten : Cholus Forbesi Pasc, und iSphenophorus n. sp. Nach Bedel (M wurden Ceuthorrhynchus verrucatus Gyll. , Sphenophorus ardesius Ol. und hemipterus L. nach Frankreich importirt. Nach Bedel (^) sind ferner Atactogemis quinque-carinatus Desbr. aus Nord- America , Acalles leporinus Chevr. von Guadeloupe und Ajnon insolitum Desbr. aus Spanien nach Frankreich importirt. Buysson ['•^] p 40 fand den südamericanischeu Brachyomus quadrinodosus Boh. bei Vernet (Dep. Allier), 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 297 Nacli Kolbe (2) stellen die Rbynclioplioreu durch den Besitz eines Rostrums und durch die einfache Kehlnaht eine höhere Organisationsstufe der Co- leopteren dar. Faust (^) p 166 definirt die beiden Gehörten der adelognathen Curculioniden in folgender Weise. I. Curcul. adelogn. cyclophthalm. : Prosternalvorderrand ohne Ausrandung und ohne Bewimperung, Augen rund oder kurz eiförmig. II. Curcul. adelogn. oxyophthalm. Prosternalvorderrand ausgerandet, häufig be- wimpert, Augen eiförmig oder nach unten zugespitzt oder quer. Die Synirmini Bedels entsprechen den Oxyophthalmen Lacordaires. Die Oxyophthalmen werden in 4 Gruppen gespalten: A. Die Ausrandung des Prosternalvorderrandes flach, mit gleichlangen, kürzeren, schuppenartigen Härchen bewimpert, die Ecken der Ausrandung nicht oder nur schmal gegen die Augen erweitert und mit längeren, ungleichlangen , steifen , dem Kopf anliegenden Borstenhaaren bewimpert. 1. Fühlerfurchen unter die Augen gebogen: Tanymecini; 2. Fühlerfurchen oberständig ; Corigetini. B. die Ausrandung des Prosternalvorderrandes tief, mit oder ohne kurze Wimperhaare, Augenlappen breit entwickelt, mit oder ohne Wimpern aus kurzen, gleichlangen Härchen. 3. Fühlerfurchen nicht unter die Augen gebogen, mehr oder weniger oberstäudig : Eremnini ; 4. Fühlerfurchen unter die Aiigen gebogen : Leptopsini. Zu den Eremniuen kommen Ptochidius und Rhypochromus Motsch. , zu den Leptopsinen ein großer Theil der Cyphinen und Geonominen Lacordaires, zu den Corigetinen : Corigetus Desbr. und Eusomi- dius n. g. Im Anschluß an diese systematischen Auseinandersetzungen gibt Verf. eine Characteristik der Gattung Corigetus Desbr. und liefert eine Bestim- mungstabelle der russisch - asiatischen Arten derselben 11, 7 n. Bezüglich Piazomias (Typ. virescens Schh.) constatirt Verf. p 179, daß diese Gattung ofl'ene und nicht, wie Lacordaire angibt, geschlossene Körbchen der Hinterschienen besitzt. Faust (^] stellt Metacinojis und Auchmeresthes zu den Eugnominen und gibt eine Übersicht der Gattungen dieser Gruppe. Nach Faust (^j p 150 gehört Strojjhomorphus zu den Laparocerides Lac. Aurivillius gibt eine Übersiebt der gen. und sp. der Brachyceriden in Form von Bestimmungstabellen. Die Brachyceriden zerfallen in die Subfamilien Microcerinae mit Epistis, Microcems und Gyllenhalia n. und Brachycerinae mit den Tribus Protomantinae : Proifowa««;« und Trib. Brachycerinae verae ; Theates und Brachycerus Typus apterus L.). Characterisirt werden: JSpisus 4Z, 18 n., Microcerus 22, 4 n., Gyllenhalia n. 1, Protomantis 3, 2 n., Theates 3, in., Brachycerus 1, Brachi/ceropsis n. 1. — Chevrolats hinterlassene Manuscripte über Calandrineu werden unter der Redaction von H. Jekel veröffentlicht und damit die im Jahre 1882 begonnene Arbeit des Verfassers (cfr. Bericht f 1883 II p 166) zum Abschluß gebracht. Verf. behandelt: Phrynoides n., In., Poly- aulax n. 1, Meroplus n., 10 n., Ajilotes 5, 2 n., Trachorhopalon 11, 7 n., Axino- phorus 1, Sphenophorus 62, 4 n., Phodobaemcs 3i, 22 n.^ Homalostyhis n. 1, Paradiaj^horus w . 1, Odoij^orus n. 1, Temnoschoita Vl. 1, Cosmopolites u. 1, Mero- thricus n . 3 . Außer den neuen Ai ten werden beschrieben : Trachorrhopalon stran- gulaius Gyllh., Rhodohaenus tredecimpunctaius 111., implicatus Gyll. [noctigerus Chevr.), cinctus (jyW., Merothricus rii sticus QyW. Faustf-') bespricht die Gattungen Buhalocephalus und Macrotarsus und gibt eine Bestimmungstabelle der europäischen Hyperinen- Gattungen : Buhalocephalus , Macrotarsus , Hypera , Donus , Metado- nus, Phytonomus und Coniatus. Faust ^] p 235 erörtert in einer Tabelle die Unterschiede der Gattungen Holcorrhinus^ Cyclomaurus, Cyrtolepus und Mylacus. Leconte (^) p 29 bespricht die Gattung Acrisius Desbr. Reitter (^) gibt eine Be- stimmungstabelle der ihm bekannten Alophisaxitn 5, 1 n. Stieriin (^) setzt seine Bestimmungstabellen der paläarctischen Brachyderini 298 Arthropoda. fort und beschreibt: Strophosomus, subg. Strophosomus s. str. 21, In., subg. Neliocarus Thoms. 15, 2 n., Stropho>norphus 18, 4 n., Pholicodes 8, 2 n., Euso- mus 19, 3 n., Elytrodon 6, Brachyderes 30, In., Caulostrophus 4, Mesagroicus ?> , SitonesbS, 3 n., Trachi/phloeics 3Q, 3n., Cathormiocerus 25, 3 n., Bradycmetusl, Axyraeus 1 . Im Anschlüsse daran gibt Verf. einige Corrigenda und Addenda zu den Bestimmuugstabellen der Otiorrhynchinen und des 1 . Theiles der Brachy- derinen. Stierlin (-) liefert einen Catalog der paläarctischen Braehyderinen. Thomson ('^) diagnosticirt RhyncMtes aeneovirens Marsh, und Omias molUcomus Ahr. als neu für Skandinavien. Bedel (') absolvirt in seiner Bearbeitung der Rüsselkäfer des Seine-Beckens die Subfamilie Curculionidae und characterisirt in Bestimmungstabellen aus der Tribus Mecinini: Mecinus [=Gymnetron Schh. -f Mecinus Germ.) 22, 1 n.; Trib. Sibiniini: Sibinia (= Tychius Schh. -\- Miccotrogus Schh. -\- Sibynes Schh.) 27; Trib . Lignyodini : Lignyodes 1; Trib. Cionini : Cionus (= Cionus Clariv. -f- Cleopus Steph. ex p. -{- Platylaemus Weise) 10 (12), Stere- onychus 1; Trib. Ceuthorrhynchini : Mononychus 1, Ceuthorrhynchus [= Tapino- notus Schh. ex p. + Nedyus Steph. + Rhytidosoma Steph. + Coeliodes Schh. = Ceuthorrhynchus s. str. + Poophagus Schh. -f" Ceuthorrhynchidius Dnv. -(- Stenocarus Thoms. -\- Cidnorrhinus Thoms. + Cnemogonus Lee. -f- Coeliastes Weise + AllodactylusWeise) 93 (97), 2 n., Amalus [= Pachyrrhinus Steph. ex p. -\- Phinoncus Steph. -j- Phytobius Schh. + Litodactylus Kedtb. + Eubrychius Thoms. + Amalus s. str,) 17(19); Tribus Barini : Limnobaris n. 1, Baris {= Baris Germ. + Eumycterus ^c\ih.. -\- Melaleucus Chevr.) 10(17); Trib. Orobitini: Oro- bites l; Trib. Coryssomerini : Co?-yssomerMs 1 ; Trib . Balanini : Balaninus ii {12); Trib. Calandrini: Sphenophorus 2 (4), Calaiidra 2; Trib. Dryophthorini : Dryoph- thorus 1; Trib. Cossonini : Pentarthuml, Cossonus 3, Rhyncholus [= Phloeophagus Schönh. ex p. + Hexarthrum WoU. ex p. + Eremotes WoU. + Syntomocerus WoU. -f- Stereoeorynes Woll.) 6 (13), Caidotrypis 1, Codiosma n. (= Phloeophagus Schönh. ex p.) 1. Gozis (') gibt eine Übersicht der französischen Gattungen aus der Tribus Ceuthorrhynchini und stellt einige neue Genera oder Subgenera auf. Gozis '(^) fand den spanischen Derelomus chamaeropis F. bei Cannes. Tholin (-) gibt eine Notiz über den Fundort von Stereonychus telonensis Gren. Nach Bedel (^) wird Baris dalmatina H. Bris. , nach Bedel [^] Trysibius tenebrioides Pall. und Apion insolitum Desbr. mit Unrecht unter den französischen Arten aufgeführt. Hin- gegen ist die Heimat des aus Spanien angegebenen Pentarthrum Nervei All. die Normandie und Bretagne. Welse ('") gibt eine Bestimmungstabelle der 19 deut- schen Magdalis und erörtert besonders die Geschlechtsunterschiede der Arten. Verf. bespricht noch Omias HanaM Friv. Czwalina (^) erhielt Magdalis coerulei- pennis Desbr. von Königsberg und fand die nordische Magdalis violacea Seidl. am Monte Rosa, die französische M. punctulata Muls. in Vallombrosa im toscanischen Apennin. Czwalina ("-) p 254 gibt Otiorrhynchus maurus Gyllh. aus Preußen an. Schultze fand den bisher nur aus den Pyrenäen bekannten Otiorrhynchus procerus Stierl. bei Mombach. Schreiber (^) fand Hypera palumbaria, intermedia var., marm,orata, Cleonus emarginafus, Lixus sanguineus und junci auf dem Karst. Letzner ('^) bespricht die schlesischen Varietäten von Otiorrhynchus maurus Gyllh. und alpinus Rieht. Desbrochers beschreibt viele Arten aus dem Mittel- meergebiet, speciell aus Nord-Africa und bespricht: Scythropus Raffrayi Desbr., Desbrochersi Rafl'r. , Wat-ioni Mars., Dichorrhimis pseudoscythropus , Tanymecus subielutinus Desbr., cinereus Desbr., Leihierryi Desbr., Thylacites punicus Desbr,, cn'JrjcoZZes Desbr., Olivieri YifäiiY . , co«ye??cr Desbr., oblongiusculusDe^hx.., argen- teus Desbr., tigratus Deshv., marmo7rttusDes,hY. , angtistus Desbr., auricollis'DQ'&bv . , tomentosus Desbr., vittatus Boh., Uhagoni Desbr., asperulus Fairm., elongatus Per. Are. sernjoes Desbr., in^aticollis F ahm., insidiosus Fairm., seriesetulosus F)es,hr., 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 299 seriepunctatus Desbr. , Crotchi Fairm. , Stephanocleonus crinipes Fahr. , Gono- cleofius mm-garitifer Luc, cristulatus Fairm., Cleonus Lejeni Fairm., Bothynoderes hispanns Chevr., Larinus Lejeni Ydixxvü.., Apion robusticome Desbr. Verf. gibt Be- stimmuugstabellen von Scythrojms 10, 2 n., und Thylacites 49, 12 n. Nach Bedel('*) p SS stammt Pachytychius leucoloma Jek. vom Senegal und nicht aus Algier. Nach Reitter (^) p S3 finden sich die caucasischen Arten 3Ieleus fallax Faust und dolosus Faust auch in Kleinasien. Heyden ("j verzeichnet Acalyptus alpinus Villa, Amalus scortillum Herbst und Anthonomus rectirostris L. von Blago- westschensk und Chabarofka als neu für das Amurgebiet. Sahlberg (^) verzeich- net von der Tschuktschen Halbinsel : Lepidophorus Uneatocollis Kirby, eine weiter über das arctische Sibirien verbreitete Art, und 1 Lepyrus n. Sahlberg (^) gibt Sitones linellus Gyllh. von der Beringsinsel an. Dohrn {^] p 63 bespricht Exophthalmus [Diaprepes] Dotiblieri Gl\6v., p 79 Proto- mantis Dregei Gyllh. und Sphenophoriis sericcms Wied. SchaufuSS und Haller be- sprechen Varietäten des Rhynchophorus femiginens Ol. PaSCOe (') hat die von D'Albertis, Beccari, Doria etc. im malayischen Archipel gesammelten Curculio- niden des Museums von Genua bearbeitet; die Zahl der Arten beträgt 341. Bra- chyderinae : Ottistira 3, 2 n., Hypomeces 2, Laodice 2, Rhinoscapha 16, 7 n., Dermatodes 4, 2 n., Pachyrrhynchiis 3, Apocyrtus 1 ; Otiorrhynchinae : Siteides 3, Phraotes n. 1 n., Apirocalus 2, 1 n., Celeuihetes 3, 1 n., Piezonotus 1, Coptorrhyn- chus 18, 13 u., JEpisomns, 4, Epilaris 1, Myllocerus 7, 5 n., Synomns n. 1 n. ; Eremninae : Phytoscaphus 4, 2 n. ; Leptopinae : Leptops 2, Stenocorynus 1 n., Otiesorus 1; Rhyparosominae : Ergias u. 1 n.., Miotus "ix. 1 n. ; Molytinae: Eutki- cusn. 1 n., Euthicodes u. 1 n. ; Aterpinae : Dexagia 1 ; Cleoninae : Lixus 6, 3 n.; Hylobiinae : Paepalosomus 2, Paepalophorus 1, Hylobius 5, 3 n., Aclees 1, Nipha- des 1, Seleuca 1, 0)~thorrhinus 4, 3 n. ; Erirrhinae : Ctylindra n. 1 n., Cenchrena 1, Hexeria n. 1 n. ; Oxycorynae : Metrioxena 1 n. ; Belinae : Belus 2, 1 n. ; Eur- rhynchinae : Eurrhynchus 1 ; Cyladinae : Cylas 1 ; Apioninae : Apioyi 1 n. ; Attelabinae : Apoderus 8, 6 n., Aitelabus 1, Euops 3; Rhynchitinae : Rhynchites 5, 4 n., Eugnampttis In,, Auletes 1 n. ; Balanininae : Balaninus 2, In.; An- thonominae : TelpJmsia n. 1 n., Niseidan. 1 n., Imera u. 1 n. ; Prionomerinae : Synnada In.; Tychiinae : Eudelau. In.; Laemosaccinae : X«ewosaec?q^\>v . var. biskrensis n. Biskra; Faust {^) p 242 — ßavescens n. Chodschent ; Faust (^) p 188 — betuleti n. Washington, Distr. of Columbia; Horn (•^) p 161._ Orobitis nigrinus n. Bosnien, Osterreich; Reitter (^) p 213, Orthomias n. Tanymecini, prope Piazomias, seriatus n. Transvaal; Faust (^) p 72. Orthorrhinus patruelis n. Australia, Somerset, Neu-Guinea, Fly River, Yule-Isl., Waigiou, Aru-Isl. p 225, perversusn. Fly River, Ansus, Batchian, Waigiou, Aru, Tondauo, brachypus n. Yule-Isl., Fly River p 226 : Pascoe (^). Orthosinus sculpticollis Motsch. = [Xeriodermus] porcellus Lac. ; Ctievrolat p 112. Orthotemnus disparilis n. Somerset; PasCOe (^) p 322. 20* 308 Arthiopoda. Osphilia afßnis n. Goram; Pascoe {^) p 283. Othippia guttula n. Somerset; Pascoe (*) p 291. Otiorrhynchus StarcM n. Noworossisk, West-Caucasus ; Retowski p) p 10 — Re- totusMi n. Tscherkessien ; ReiÜer (^^) p 387 — tubercidatus n., obtusoides u. Karst; Stierlin (^j p 272 — tenuis n. Namagan ; Stierlin (^) p 294 — griseus White zu Catoptes; Sharp (») p 299. Ottistira irrorata n. Neu-Guinea, Salwatty p 202, 7nixta n. Aiu-Isl. p 203, Pascoe (1). Oxydema naso d. Hatam, elongata n. Singalang ; Pascoe (^) p 321. Oa;ym'« n. Baridinae, ^xo^q Myctides, lineatus n. Fig., Sumatra, Mt. Singalang; Pascoe (1) p 294. Pachycerus tacilurnus n. üsgent p 166 atrox n. Wernoje p 167; FauSt (*). Pachyops ptmlla n. Java, Teibodas; Pascoe (^) p 323. Pachyrrhinns Steph. = Amalus ^ahövih.. sect. ; Bedel (^) p 179. Pachyfychius Kirschi Tourn. = punciicollis Reitt. ; Reitter ("^j p 83 — crassirostris n. Turkestan, planiusculus n. p 174, solidus n. p 175 Taschkent; Faust (') — [Sty- phloty Chilis) avidsus u. Tlemcen, Constantine ; Faust [^] p 237. Paepalosomus zonahis Pasc. = ? dealbatus Pasc. var. ; PaSCOe (^) p 223. Pantiala n. Zygopinae, prope Semiathe, illusa n. Fly River; PasCOe (^) p 284. Paradiaphorus n. für Sphenophorns crenattis Bilbg. ; Chevrolat p 287. Pelonomus Thoms. = Amaliis sect. ; Bedel (^) p 179, Pendragon n. subg. für Otiorrhynchus ovatus und muscornm\ Gozis (^) p 128. Peritehis sardous n. Sardinien; Costa (-) p 240. Perrhaehius deponens n. Java, Buitenzorg; PaSCOe (^) p 248. Phacephorus russicus n. Turkestan , Persien p 181, hirtelhs n. Fluß Bar-Bulak p 182; Faust (3). Phaenomerus lineatus n. Fly River, Dorey; PaSCOe (^) p 324. Phloeophagus Schönh. s. str. = Rhyncholus sect. p 169, aetieopiceus Bob. zu Caulotro- pis Woll. p 198^ spadix Herbst zu Codiosoma n. p 199; Bedel (^); cfr. Rhyncholus. Pholicodes hreviusculus Mars, zu Strophosomus (subg. Strophomorphus) p 106, Deshro- chersi n. Kleinasien p 109, pnsillus n. Erzerum p HO; Stierlin (^). Phraotes n. Otiorrhynchinae, prope Celeuthetes p 208, tuberculatus n. Fig. Neu-Guinea, Fly River p 209 ; Pascoe (i). Phrydiuchus n. für Rhinoncus topiarius Germ. ; GoziS (') p 130. Phrynoides n. Calandrinae, prope Crepidotus p 94, luteus n. Para p 95 ; Chevrolat. Phylaitis confusa n. Fly River, Yule-Isl. ; PaSCOe (') p 282. Phyllerythrurus n. = Sphenophorus Chevr. s. str. olim; hierher noch Sph. aurofasciatus Breme aus Columbien; Chevrolat p 92. Phyllobiiis fulvagoides n. Greta p 387, euchromus n. Taygetos p 392 ; Reitter (^"^) — exaequatus n. Fluß Kar-Kara p 162, SoMyi n. Taschkent p 163 ; Faust {^). Phytobius Schönh. = Amalus sect.; Bedel (') p 179 — taschkenticus n. Taschkent; Faust (1) p 194. Phytoscaphus onustus n. Kandari, erro n. Java, Sumatra, Penang, Sarawak p 218 ; Pascoe (1). Piazomias modestus M.. Ssu-Kaptschugai zwischen Margelan und Osch p 178, vermi- culosus n. Harar p 180, nci,mis n. Dshamau-Davan p 181 ; Faust ("^). Platylaemus Weise = Cleopus Steph. = Cionus sect. ; Bedel (^) p 155, [^) p 57. Platyomicus quadrituberculatus n. Quango ; FaUSt (^) p 75. Platyomida binodis White zu Empaeotes ] Sharp ('') p 299. Plaiyrhamphus n. prope Shelopius Desbr. p 158, Akinin. Taschkent p 159 ; Faust ('). Platytrachelus marmoraius Faust und exquisitus Faust zu Corigetus Desbr. ; FaUSt (^j p 164. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 309 Plaxes n. Baridinae , anormal, impar n. Sarawak , Sungei Bulu; Pascoe (^) p 296. Polyaulax n. prope Liocalandra Typ. Sp/mioßhorus castaneij)ennis Boh. ; Chevrolaf p 95. Polydrusus Oberthüri n. Batna, Lambessa p 6, cinctus n. Tanger p 8; Desbrochers — nodnlosus Clievr. = cervinns v. melanostictus ] GoziS (^) p 129 — convexior Desbr. = afßnis Luc. ; Stierlin (^) p 146 — OberthüriDQ^br. = phoeniciusYsavm. ; Fairmaire [''] p 53. Poli/zeliis n. Ithyporinae, prope Psepholax^ crassicolUs n. Fig. Fly River; Pascoe (^) p 248. Poophagus ^ohövih.. = Cetähorr/ipic/ms sect. ; Bedel (^) p 161. Poroptenis glanis u. Fig., gemmifer n. Fly River p 261, sochis n. , echimys n. Yule- Isl., concretus n., mitratus n. Fly River p 262, archaicus n. Aru-Isl., vicarius n., pertinax n. Fly River, sciureus n. Yule-Isl. p 263, ordmarms n. Is. Faor p 264; Pascoe (^). Praodes n. Sophrorrhininae, Habitus von Acalles, acalloides n. Java p 254 ; Pas- coe (1). Prodioctes amoemcs n. Sarawak; PasCOe (^) p 300. Protomanth Peringueyi n., elegans n. Cap ; AurivilMuS p 21. Pse.udocholus querulus n. Yule-Isl. ; PaSCOG (^) p 297. Pseudolus n, für RhyncJwlus longulus Boh. ; Sharp (i^) p 190 Fig. Pseudomus inflatus n. Cape Jupiter, Florida; Leconte (^) p 31. Psendophytohius n. p 96, saltator n. Algier p 97; DesbrOCherS = ? Ceuthorrhynchus (Hypurus) glaucn Chew.; Bedel (^) p 163. Psiloirogus n. Cossoninae, prope Cossom/s , exiensus n. Hatam, Ansus ; PasCOe (^) p 318. Ptochus aiirichalceus n. Dolon, Otar ; FaUSt (^j p 163. P^o^/cimoro^/s n., Beccarii n. Kaudari p 233, hirtellusn. Sumatra, Mt. Singalang p 234 : Pascoe (i). R/iync/iohis lignarius Marsh.., gracilis Rosh., cylindricus ^oh.. zu subg. Phloeophagus Schönh. p 196-198, elongatus GyW)!. = platiirostris Vsmz. p 197, grandioolUs Gh. 310 Arthropoda. Bris. = cyllndricus Schh. var. p 198 ; Bedel (') — nefarius n. Taschkent, Osch, Astrachan p 190; Faust (^) — tenuis Germ. [gracUis Boh.) zu Phloephagosoma p 189, lo7igidt(s Boh. zu Pseudoliis n. p 190 ; Sharp [^^). RhynchopJiorus glabrirostris n. Macassar ; SchaufUSS p 203. Rhyncogonus n. prope Otiorrhynchus p 176, Blackhurni n. Fig., Honolulu, veshü/s n. Mauip 177; Sharp (i^). Rhypax n. Cossoninae, prope Pachyops ; ohsciirns n. Sarawak, Celebes, Sumatra ; Pascoe (1) p 323. Ehytidosoma Steph. = Cetähorrhynchus sect. ; Bedel (i) p 161 — dentipes n. Kämthen ; Reitter (i») p 389. B/iyärr/mn/s ge?itilisFsdvm. = Saint- Pierr ei A\\. \ Bedel (*) p 88 — socius n. Oran ; Faust (6) p 236. Salcus granulatus n. Yule-Isl. ; PaSCOe (^) p 256. Scythroptis longus n. Constantine p 11, somis n. Biskra, Batna p 13, meiallicus n. Nord- America p 21 ; Desbrochers — lo7igiis Desbr. = oxycedri Fairm., socius Desbr. = pi7ieii Fsavm., Wario7ii Desbv. non Mars. = callizo7iatus Fairm., j^Aoem- cius Fairm. zu Polydrttsns; Falrmaire (^) p 53. Sharpia soluta n. Turkestan p 171, ejusd. var. Taschkent p 172; Faust (^). Sibinia [Tychius] cu7-ta Ch. Bris. = juncea Reich., y?wcm Ch. Bris. nee. Kosh. = hae- wa^joiis Gyll. ; Bedel {') p 15 1 — [Siby7ies) cretosparsus Fsiivin. = [Ceut/iOfr/iy7i- chus) cupulifera Ch. Bris, zu Dichotychius n.; Bedel (^) p 88 — exigua n. Biskra; Faust (^) p 241 — siibirrorata n. Taschkent; Faust (^) p 186. Sipalus cristatus n. Macassar; Schaufuss p 204. Sitona [es] Blanchardi A\\. = fallax Rosh., fallax All. non Rosh. = crinipes Herbst: Bedel (*) p 88 — cacheta Gyllh. var. pictus n. p 123, maurita7nciis Fähr. = «m- bula7U Schönh. var. p 124, damascenus n. Damascus p 125, parallelipe7mis Desbr. = cri7ntus Ol. var., hirsutus Desbr. = laticeps Tourn. p 126, syriacus n., hebraeus n. Syrien p 127, lepidtis ^(Mi. = flavescens Marsh, var., mulax All. = ovipe7mis Hochh. var. p 130, variatm Desbr. = Brucki All. p 132 ; Stierlin (') — Bedeli n. Kara-Kul; Faust (^) p 157 — hippo7iensis n. Bona p 2, hirsutus n. Oran p 4, ar- ge7itellus n. Alger p 4 ; Desbrochers. Smicronyx robustus n. Taschkent p 175, Balassogloi n. Artscha-Masar, Samgor p 176, praecox n. Margelan, Artscha-Masar p 177 ; Faust (^). Sphaerula Steph. = Na7iophyes Schönh. ; Gozis (^) p 129. Sphe7iocorynes melanaspis n. Java; PaSCOe (') p 298. Sphe7iophorus pumilus A\\., G^?-a«f/mt Mars, und sa7iguinipe7inis Chevr. = 77ieridio7ialis Gyll. ; Bedel (^) p 191 — scoti7ius Germ, non = abbreviatus F., deno77ii7uitus nom. n. für i7iaequalis All. non Hörn p 106, sa7iguinipennis n. Süd-Frankreich, Mar- seille p 107, geminatus n. Chili, Peru, glabripes n., sidcifro7is n. Mexico p 110, crassus Blanch. var. Patagonien p 109 ; Chevrolat — glabricolUs Schh. = pla7ii- pe777ns Gyll. p 300, promissus n. Fly River, Katau p 300, atomarius n. Sumatra, Mt. Singalang, ti7icturatus n. Ternate, Batchian, Macassar, Beccar ii n.Bmii, Aru- Isl. p 301, Doriae n. Sarawak, torridus n. Aru-Isl. p 302; PasCOe (^) — iiüer- ruptecostatus n. Macassar ; Schaufuss p 204 — Morre7ii n. in London auf tropischen Orchideen gefunden , St. Katharina, Brasilien; RoelofsplO; cfr. Polyaulax , Aplotes , Homalostylus , ParadiaphQ7-iis , Odoiporus , Tenmoschoita. Merothricus. Stenoca7-us Thoms. = Ceuthori-hy7\clms sect. ; Bedel (M p 161. Ste7iocor7jnus marginatus n. Australia, Somerset; Pascoe (^) p 218. Ste7\oderma n. Erirrhinae , prope Erirrlmius -^ 91, femiginean. Nyassa-See p 92, Faust (^). Stenotrtipis exilis n. Aru-Isl. ; Pascoe (^) p 313. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 311 Stereoborus ijiductus n. Somerset; PaSCOe (^) p 320. Stereocorynes Woll. = Rhyncholus sect. ; Bedel (') p 196. Stereoderus longipennis n. Hatam p 350, teres n. Ternate p 321 ; PaSCOe (^). StereonycJms cfr. Cionus. Strophomorphis caspicus n. Kasumkent, West-Persien, Deshrochersi u. Syrien p 106, hebraeus n. ibid., barbarus n. Algier p 108; Stierlin (^] — virescensn. Chisch-Ku- priuk bei Taschkent; Faust (i) p 149. Strophosomus globosus n. Spanien p 100, [Nelincarus] piisillus n. Süd-Portugal p 103, Reiiteri n. Andalusien p 104, pubemhs Chevr. = huelvanus Kirsch, myops Chevr. = Ovulum Seidl. p 105; Stierlin (^) — [Neliocarus] Kirsc7ii n. Nyassa-See ; Faust (») p 89. Sympedms lepidus n. Neu-Seeland ; BrOun (2) p 387. Synnada sylviella n. Kandari ; PasCOe (^) p 237. Synommatus Uneatus n. Java, Tcibodas p 310, interruptusn. ibid. p 311 ; PasCOe (')• Synomus n. Otiorrhynchinae, ^vo^^q Myllocerus ^ cep/m/o^es n. Australia, Somerset; Pascoe (1) p 217. Syntomocenis Woll. = Rhyncholus sect. ; Bedel (*) p 196. Syrichius rusticus n. Yule-Isl. ; PaSCOe (^) p 271. Tachygontis tardipes Lee. var. Arizona; Leconte (^) p 32. Tadius n, Sophrorrhininae , Habitus von Ertrrhinus, erirrhinoides n. Macassar ; PaS- coe (1) p 253. Tanymecus Fausti vi. Algier; DesbrOCherS p 20 — (Esamus) albüaterus n. Namagan p 183, nothus n. Taschkent, Syr-Daria p 184 ; Faust {^). Tapinonoius [Tapinotiis Schönh.) ex parte = Ceuthorrhynchus sect.; Bedel (^) p 161. Tarchus n. Calandiinae, prope Phloeophagus, pwguis n. Mt. Singalang ; Pascoe (') p 314. Telaugia assimilis n. Fly River; PaSCOe (^) p 283. Telj}husia n. Anthonominae, prope Tychiosoma p 235, dihita n, Sumatra, Mt. Singa- lang p 236; Pascoe ('). Temnoschoita n. für Sphenophorus guadrtmaculalus Gyllh. , [quadripustulatiis OL); Chevrolat p 289. Tetraspartus n. Cossoninae, prope Dryophthorus^ bagoides n. Java, Tcibodas ; Pascoe (1) p 309. Theates ludificator n. N'Gami ; Aurivillius p 22. Theoelia n. Sophrorrhininae, Habitus von Chaetectetorus, bifasciata n. Fig. Yule-Isl.; Pascoe (1) p 253. Theogama n. Baridinae, prope Pseudochohis , lugubris n. Fig. Celebes, Kandari; Pas- coe (1) p 295. Thisus n. Ithyporinae, verwandt mit Libaeba, Diethusa etc., biguttatus n. Fig. Suma- tra; Pascoe (') p 250. Thryogenus Bed. nicht für Erirrhinus Schönh. einzuführen; Faust (^) p 92. Thylacites variegatus var. proximus n. Oran p 35, persulcatiis Fairm. = argetiiensFevr. p 37, bishrensis n. Biskra p 41, aurovittatus n. Philippeville p 43, multistriatus n. Oran, auricollis Desbr. var. Urticulus n. Lalla Marghnia p 48, ejusd. var. auri- thorax n. Spanien p 49, depilatus n. Oran p 49, aenescens n. Tanger p 51, lusita- tanicus n. Lusitanien p 55, squameus n. Süd-Spanien p 57, intermedius n. Lusita- nien p 58, pilosus var. sareptanus n. Sarepta p 60, substriatus n. Spanien p 61, Perezi n. Süd-Spanien p 72 ; DesbrOCherS — scobitiatus Ko\., vemicicollis, mon- golicus, glaums Faust zu Xylinophorus ; FaUSt ('') p 177. Timalphis n. subg. für Otiorrhynchus chrysocomus Germ. ; GoziS (^) p 127. Trachorrhopalon strangulatus Gyllh. var. albolineatus n. Malacca, reßexus n. Ceram, p 102, leucogrammus n. Ceylon, hwneralis n. China, Cambodgia, cincticaudan. Ma- 312 Arthropoda. lacca p 104, Uneolata n., Hornsfieldi w.. Jicvdi^ ßssicauda n., Cambodgia p 104, in- versicornis n. Ostindien ? p 105; Chevrolat. Trachyphloeus mm-occanus n. Mai'OCCO p 139, rostratus Thoms. = scaber L. p 139, Desbrochersi n. Oran, muricatus n. Süd-Spanien p 141 ; Stierlin (^) — rugosus n. Neu-Seeland; Broun (2) p 386. Tychanus ventralis n. Neu-Seeland; BrOUtl (^j p 387. Tychius Schönh. ex parte = Sibinia Germ, sect.; Bedel (') p 149 — acuminirostris Bris. zw. Miccotrogus] Bedel (^) p 57 — gigasn., retusus n. Taschkent p 181, Kuschaheivitschin. Andidjan p 182, Bedeli n. Taschkent p 183, conformis u. Margelau, urbanus n. Artscha-Masar p 184, mixtus n. Taschkent, oschianus n. Osch p 185, distans n. Osch p 186; Faust (^) — bisJcrensis n. Biskra ; Faust (6) p 240; cfr. Sibinia. Tyloderma nigrum Casey vind ptmctatuni Casey = aereum Say; Horn (^*^) p 111. Tyrtaeosus concretus w. Somerset p 271, pardalis n., bicolor n. ibid., aversandus n. Fly River, discrepans n. Yule-Isl. p 272; Pascoe (')■ X.anthochelus Eversmanni Faust = ? montivagus Chevr., ßrmus Gyllh., Schönh. = nornas Pall., ßrmus Faust = nomas Faust = Eversmanni Ykhx . , Schh.; Faust (^) p 166. Xenoirupis congruens n. Tawan-Isl.; PaSCOe (^) p 322. Xylinojihorus n. für die Thylaciiesaxten mit verwachsenen Klauen , prodromus n. Naryn; Faust P) p 177. Zena u. Baridinae, prope CyneM?« p 295 , cynethioides \x. Fig. Celebes , Kandari, Sarawak, Buru, Amboina; Pascoe (^) p 296. Zygara n. Zygopinae, Typ. Asytesta Doriae Kirsch Fig. von Yule-Isl.; Pascoe (') p 288. Zygops seminiveus n. Arizona; Leconte (^j p 31. Familie Scolytidae. Buddeberg p 9 1 - 1 00 beschreibt die Larve und Puppe von Scolytus pyri Ratzebg., rugulosus Ratzebg., Ernoporus fagi Muls. und Xylocleptes bispinus Duft, und macht Mittheilungen über die Lebensweise dieser Arten. Merriam bespricht die Ver- wüstungen von Corthylus punctatissimus Zimm. in den »Sugar-Maples« im Nord- osten von New- York. Henschel beschreibt einen neuen Tom/cws, der auf der Insel Meleda in Dalmatien ältere Culturen von Pinus halepensis vollständig zer- störte. Fowler (^j h^^^xicM, Hypothenemus eruditusVfQ&iy^., Hamilton (^j Scolytus rugulosus Ratzebg. und dessen Lebensweise. Fauvel ('') bringt Ergänzungen und Correcturen zu der in Revue Ent. Caen 1883 veröffentlichten Bearbeitung der Xylophagen von Europa und gibt für zahlreiche Arten der Fauna gallo-rhenana neue Fundorte an. Gozis (^) vereinigt Glyptoderes und Hypothenemus [Stephano- deres) mit Cryphalus und Liparthrum mit Hypoborus als Untergattungen. Weise (11) fand Pityophthorus exsculptus Ratzebg. bei Eberswalde. Czwalina (^j fand Pityophthorus macrographus Eichh. , Tomicus rectangulus Eichh. und Dryocetes aceris Lindem, in Preußen. Blackburn & Sharp ('i) verzeichnen von den Hawaii- Inseln: Xyleborus 6 n., Hypothenemus 3, In., Crossotarsus 1. Bis a,u{ Hypo- thenemus eruditus Westw. und Crossotarsus externedentatus Fairm. sind die Arten endogen. Crypturgus G anner sdorßeri Vi. Euböa; Reitter (!•') p 389. Hypothenemus griseus u. Honolulu; Blackburn p 194. Tomicus Lipperti n. Dalmatien, Insel Meleda; Henschel Fig. Xylebo7-us obliquus n., tru7icatus n. Oahu p 192, insularis n. Kanai, Oahu p 193; 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik vind Systematik etc. 313 Sharp (*^) — rugatus n. Oahu p 192, immatiirus n. Hawaii, Oahu, frigidus n. Maui, Haleakala p 193 ; Blackburn. Familie Platypidae. Duges (^) beschreibt und illustrirt die Entwicklungsstadien von Chapuisia mexicana. Chapuisia '0.. prope Diapus, mexicana "o.. Mexico; DUQOS C^) p 58. Familie Brenthidae. Amorphocephalus hospes \s.. Zanzibar, Kitui ; Kolbe (^) p 188. Anisognathis augurius n. Caffraria; Kolbe (^) p 1S7. Miolispa hicanaliculata n., semivelata n. Macassar, striata n. N-S-Wales ; SchaufuSS p 205, 206. Familie Aglycideridae. Blackburn & Sharp ('^) verzeichnen von den Hawaii-Inseln 30 Proterrhinus, 11 n. Blackburn gibt eine Bestimmungstabelle derselben. Außer den ziemlich zahlreichen Arten der den Hawaii-Inseln eigenthümlichen Gattung Proterrhinus sind bis jetzt nur 2 Repräsentanten dieser interessanten synthetischen Familie be- kannt , 1 von den canarischen Inseln und 1 von Neu-Seeland ; Figg. zu : Proter- rhinus vestitus (^, Q , Sternalis Q^, clispar (^, Q. , Lecontei (^, Q, , insignis (^, Q . Proterrhinus linearis u. , scutatus n. Kanal p 169, similis n. Hawaii, Mauna Loa, laticollis n. Oahii, Waianae Mount. p 170, rebus tus n. ibid., tarsalis n. Mauna Loa p 171; Blackburn — ineptusu. Lanai p 171, integer n., detritus n. ibid. p 172, longicornis n., insignis u. Fig. ibid. p 173 ; Sharp (^^). Familie Anthribidae. Mac Lachlan erwähnt eine Brachytarsus^xi , welche im O des chinesischen Wachsinsectes : Ericerus Pela Westw. parasitisch lebt. Reitter {^] gibt eine Bestimmungstabelle der europäischen Choragus 4, 1 n. Dohrn (^j bespricht p 384 Nessiara histrio Pasc, von Luzon, LGCOnto (^) p 32 JLenorchestes americanus Motsch. von Florida und Texas. Brachytarsus paidulus Casey = tomentosus Say c;^; Horn ('*') p 111. Choragus caucasicus Motsch. = Sheppardi Kirby, pygmaeus Motsch. — Sheppardi Kirby var. p 275, Ga^ea^sü Villa = ? Sheppardi y'ax., vittatus n. Lirik. Talysch- gebirge p 276 ; Reitter (^) — nitens n. Tyngsboro, Massachusetts ; Leconte (^) p 32. Mauia n. prope 0;:ofomerMs p 194 , satelles n. Maui, Wailuku Valley ; Blackburn p 195. Toxotropis pusilla Lec. var. Texas, fasciatus n. Columbus, Texas; Leconte (^) p 32. Familie Bruch idae. Lefevre (■'), Poujade [^, "*) und Franchet beschreiben und illustriren die Ent- wicklungsstadien von Briichus [Caryohorus) nucleorum F. aus den Früchten von Orbignya humilis Mart. M. Quedenfeldt {'] bespricht die Lebensweise von Cary- o<^ Arthropoda. oboriis arthriticus F. Nacli KarSCh (^j lebt Bmchus spinipes Er. nicht in China, sondern in Chile in den Samen von Aeacia cavenia. Nach Fairmaire {■*) p 65 wurde Bmchus [Caryoborus) pallkbis Ol. vom Senegal in Lissabon und Kustendje gefunden. GoziS (^) p 125 theilt mit, daß die bisher bekannten Arten der Gattung Andromisus [Pachymerus] : difformis Ol. und icamae Guer. ziemlich häufig in Ha- fenstädten gefunden wurden, und beschreibt eine neue in Bordeaux entdeckte Art dieser Gattung. Horn (^) gibt eine Bestimmungstabelle von 5 Arten der neuen nordamericanischen Gattung Zabrotes. Sharp [^) beginnt die Bearbeitung der Bruchiden von Central-America. Bisher sind behandelt die Gattung Bmchus mit 122 sp., 95 n., und Spermophagns mit 25 sp., 21 n. Von Caryoborus sind vor- läufig nur 3 sp. aufgeführt, 1 n. Verf. protestirt gegen die Verwendung des Namens Mylabris Geofir. für Bmchus autor. und vereinigt Kytorrhhms Fisch, und Pachymerus Latr. (= Andromisus Goz.) mit Bruchus und Zabrotes Horn mit Sper- mophagns. Von bereits beschriebenen Arten werden besprochen : Bruchus brasi- liensis Thunbg., longicolUs Fähr., ruficornis Chevr., scutellaris F., pruininus Horn ?, limbaius Horn, obsoletus Say, clandestinus Motsch., humeralis Gyll., prosopis Lee, quadrimaculatus F., impiger Horn, mimitus F., cmÄz'cms Motsch., rubiginosusM-Oi^oh.^ umbracidatus Motsch., triangularis Say, ta7itillus Motsch., Spermophagus lineolaius Motsch., j»/an?yem!/r Chevr., titivilitius Boh., Caryoborus rubidus Chew . , testaceus Motsch. Abgebildet werden 25 n. sp. Andromisus Goz. [Pachymerus Latr.) = Bruchus sect. ; Sharp [^) p 439 — Mariae n. Bordeaux, importirt ; Gozis (') p 126. Bruchus cubiculus Casey = impiger Horn; Horn ['^^) p HO — longi/ro7is n. Fig. Pa- nama p 440, albotectus n. Fig. Mexico, Brit. Honduras, Guatemala, Panama p 441, cristicollis n. Mexico p 442, serratissimzis n. Guatemala, Juno n. Guatemala, Panama p 443, Godmanin. Fig., calderensis u. Panama, confinis n. Guatemala, Panama p 444, incensus n. Fig. Panama p 445, pictifemur n. Mexico p 446, Sal- vini n. Fig., columbinus n. Fig. Guatemala p 447, aberrans n. Fig. Panama, mun- dulus n. Mexico p 448, cordifer n. Guatemala, celatus n. Panama p 449, lituratus n. ibid., suaveolus n. Fig. Nicaragua, Panama p 450, ruficoxis n. Guatemala, Ni- caragua p 451, difßcilisn., argillaceus n. Guatemala p 452, argutus n. Mexico, Guatemala p 452, vexaius n. , pertinax n. Mexico p 453, omatus n. ibid. p 454, sere7ius n. Guatemala, submuticus n. Mexico p 455, limpidus n., solitarins n. Gua- temala, elevatus n. Panama, Guatemala, p 456, crassuhis n. Panama, vacillator n. Mexico p 457, puellus n. Panama p 458, mexicanus n. Mexico, ptinoides n. Guate- mala p 459, cyanipennis n. Fig. Guatemala, Panama, serraticulus n. Mexico p 460, modestus n., multisignatus n. Guatemala p 461, ophthalmicus n., debilicornis u. ibid. p 462 , obscuriceps n. Mexico, brevicor7iis n. Brit. Honduras p 463 , muricatus n. Panama, inanis n. Mexico, Brit. Honduras p 464, guttifer n. Mexico, Guate- mala, alticola n. Fig. Guatemala p 465, laminifer n. Guatemala, instabilis n. Mexico, Guatemala, Honduras p 466, morosus n. Mexico, Guatemala p 466, usücolor n. Mexico p 467, militaris n. Mexico, Brit. Honduras, obestdus n. Guatemala p 468, trisignatus u. Panama p ^%^ , ßavivenb-is n. Guatemala, medialis n. Mexico, iiiter- ruptus n. Mexico, Guatemala p 470, seclusus n. Panama, monachus n. Guatemala p 471, aegrotus n., semicolor n. ibid., cognafus n. Mexico p 472, piger n. Mexico, Nicaragua p 473, immuiiis n., viduaitis n. Panama p 474, Sallaei n. Mexico, Gua- temala p475, longivetitris u. [="! protracius Born) Nord-America, Arizona, Mexico, insolitus n. Guatemala p 476, lineaticollis n. Fig. ibid., Championi n. Panama p ^11,pullatus n. Mexico, Guatemala, Nicaragua, Panama p 478, siylijer n. Mexico, pedicularius n. Guatemala, pusillimus n. Mexico, Guatemala p 479, brevipes n. Guatemala, ßavicomis n. Mexico p 480, inßrmus n., probus n. Guatemala, 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 315 aequalis n. Mexico p 481, lonyiäus n. Fig., apicalis n. Guatemala p 482, ß^arhis n., rcstricius n., optatus n. ibid. p 483, ricinus ibid., cuhiciformis n. Fig. Mexico, Brit. Honduras, Guatemala p 484, leuctirus n. Mexico, Guatemala p 485, calli- rhijns n. Nicaragua, contaminatus n. Mexico p 486, compactus n. Fig. Guatemala p 487, leucosomiis n. Mexico, Guatemala, Panama p 488, leucospilus n. Fig. Mexico, reticiilatus n. Panama p 489, excellens n. ibid., porostis n. Guatemala p 490; Sharp (^j. Caryohorus chiriquensis n. Fig. Panama; Sharp (^) p 504. Pachymenis fuscicrus Motsch. = ? Brtichus brasiliensis Thunbg., tuberculatus Motscli. = ? Br. longicollis Fähr. ; Sharp (3) p 440. Spermophagus pectoralis n. Mexico, Guatemala, Nicaragua, Panama p 492, propiyi- quus n. Fig. Guatemala, Panama, gravidus n. Guatemala, Mexico p 493, dispar n. Fig. Panama p 494, pollens n. Brit. Honduras, obdnctus n. Panama, ohscums n. Mexico, Brit. Honduras, Guatemala, Panama p 495, togatus n. Guatemala, speciabilis n. Panama, leporinus n., luctuosus n. Guatemala, Panama p 497, perfec- tus n. Mexico, trisignatus n. Mexico, Brit. Honduras, Guatemala, Panama p 498, geminatus n. Panama, rtifulus n. Guatemala p 499, dytiscinus n. Fig. Brit. Hon- duras, Guatemala, scutellaris n. Guatemala, Nicaragua, Panama, centralis n. Fig. Brit. Honduras, Guatemala, Panama p 500, marmoratus n. Fig. Mexico, Panama p 501, picius n. Mexico, irroratus n. Fig. Guatemala, Panama p 502 ; Sharp ("^). Zabrotes n. von Bruchus verschieden durch einfache Klauen, bewegliche Dorne der Hinterschienen, scharf gerandeten Thorax und weit getrennte Mittelhüften ; Horn (6) p 156 — = Spermophagus Schönh.; Sharp (^) p 492 — cruciger n. Colorado, speciabilis n. Arizona, Nevada p 157, obliteratus n. Arizona, siibjiitens n. Georgia, densus n. California, planifrons n. Arizona p 158; Hom (^). Familie Cerambycidae. Leng (^) beschreibt ein Monilema mit abnormer Tarsenbildung, Casey [^] eine mißgebildete Acmaeops. Lameere (^) beschreibt und bildet ab die Larve von Psa- lidognatlms Thomsoni Lam, (= modestiis Thoms. nee Fries), die Larve von Macro- toma palmata F. und die Puppe von Parandra polita Say, Duges ('*) die Larve und Puppe von Mallodon angustatum Thoms., Duges (") die Entwickelungsstadien von Cyllene erythropus Chevr. Riley (Rep. of the Entomol. 1884, Titel s. u. Ab- schnitt XIH) bildet die Larve von Monohamnms confusor Kirby ab, Duges {"'] die von Acanthoderes Borrei n. sp. Nach Lameere (*) verpuppt sich die Larve von Cor toder a Immer alis Schall, sowie die von Acmaeops collaris in der Erde. Packard bespricht die Eiablage des «Maple tree borer« Plagionotus [Glycobius) speciosus Say, Clarkson (^) die Lebensweise von Elaphidion villosum, Hamilton (^j von Gaurotes abdominalis Bland, und Saperda discoidea F., Seher von Rhopalopus sanguinicollis. Lameere [^] spricht sich gegen die Trennung der Parandrini und Spondylini von den Cerambyciden aus und bezeichnet die Mallodontinen und Colpoderinen als vermittelnde Formen zwischen Lucaniden und Cerambyciden. Dohrn (^j und Lu- cas (^) besprechen Hypocephalus armatus und seine systematische Stellung. La- meere (') gibt auf die Fauna Belgiens bezügliche Zusätze und Correcturen zu Fauvel's Catalogue des Longicornes gallo- rhenans. Olivier (^) und Buysson {^) geben Rosalia alpina aus dem Dep. de l'Allier an. M. Quedenfeldt (^) verzeichnet Purpuricenus Köhleri L. aus der Mark, Czwalina (^) p 216 Clytus lama Muls. und Monohammus quadrimaculatus Motsch. aus Preußen, Weise (^) p 423 Phytoecia molybdaena Dalm. von Berlin, M. Quedenfeldt (") Saphanus piceus vom Harz, Schreiber (') CalUdium hungaricum, Exocentrus adspersus und Agapanthia Cynarae von Görz. Letzner (^, ^ erörtert die in Schlesien vorkommenden Farbenvarietä- 316 Arthropoda. teil von Leiznerta lineata Letzn. und Oxpnirus Cursor L. LGtznGP (") gibt 9 für Schlesien neue Bockkäfer an. Wilke bespricht eine Varietät von Toxotiis cursor Q aus Ober-Bayern, Gangibauer (2) bespricht Strangalia appr oximans Rosh. , Grammo- ptera rußcornisY ., Callidium lineare Hampe, Dorcadion simile Kr., haleppense Kr., DestinoiYsiiYm., msulareKi'. Heyden ("^) bespricht Toxoius iataricus Gehl., Dor- cadion glycyrrhizae F. und mystacimim Ball, von Namagan. Heyden ('') verzeich- net Acmaeops septentrio^iis Thom. von Nikolajevsk als neu für das Amurgebiet. Lameere (-) hQ^^richi PsaUdognathus modestus Yx\q?, , Frie7idi GyslJ , Cyrtognathus Stigtieti Guev., Eurynassa OdeivahniVdi.'&c Q. nnä Dioclides prionoides Thoms. Q , Dohrn (■*) p 138 Purjmricenus Westwoodi M.Q\[y , p 141 Phryneta mamillata Dohrn, p 147 Anastetha raripila Pasc, SchaufuSS Eucorynus crassicornis F. Ritsema {}] liefert Correcturen zu VoUenhoveus Bearbeitung der Batocerinen des Leydner Mu- seums. Ritsema (-') bespricht Batoceraa.vten von Sangir. Blackburn & Sharp (11) verzeichnen von den Hawaii- Inseln : Parandra 1, Aegosoma 1 , Astrimus 1, Ceresium 1, Sotenus 1, Clytarlus 10, 2 n., Clytus 1, Lagocheirus 1, Micracantha 1, Oopsis 1 . Die Gattungen Astrimus , Soienus und Clytarlus sowie die Parandra- und Aegosoma-Ari sind endogen. Abgebildet werden Clytarlus microgaster, Blach- hurni^ fragilis, Sotenus seliger^ Microcantha nutans. Sharp (*) bespricht Plagithmy- sus pulverulentus Motscli. (eine wahrscheinlich polynesische Art , die von Mot- schulsky irrthümlich als californisch bezeichnet wurde) , attenuatus Boisd. und distortus Chevi'. Leng (1) setzt seine Bestimmungstabellen der nordamericanischen Cerambyciden fort und behandelt: Gnophalodes 1, Chion 1, Eburia 9, Romaleum 5, Elaphidion 18, Aneßus 5, Eustronia 1, Tylonotus 1, Zamodes 1, Compsal, He- terachthes 3, Plectromerus 1, Curius 1. Abgebildet werden 54 sp. Horn (*2) be- schreibt in Leng's Arbeit Romaleum 1 , Aneflus 6 und characterisirt die Gattung Eustroma Lec. Horn (') revidirt die nordamericanischen Oxoplus 4, In., Steno- sp/ienus 6, 4 n., Monilema 2, Collapteryx 11, 2 n., Monohammus 5, Goes 6, Dor- caschema 3, Oncideres 4 , In., Eupogonius 4, Dysphaga 3, In., und bespricht p 176 Crossidius Immeralis Lee, p 180 Acmaeops viola Lec. und tumida Lec. Ha- milton (^) bespricht Toxotus Sc/mumi hec, Leptura vibex Newm., Microclytus ga- zellula Hald. Bates bringt sein umfangreiches Supplement zu den Bockkäfern von Central- America zum Abschluß. In demselben sind 377 n. sp. beschrieben. Für Central- America neue Gattungen sind : Prionus , Orthomegas , Tragosoma , Ateni- zus, Amphelictus, Chion, Eustroma, Caccophrissus, Eurysthea, Sphaerionillum, Ecte- nessa, Piezocera, Hemilissa , Gnomidolon, Phormesium, Lampromerus, Curius, Rha- gium, Pachyta, Acmaeops, Choriolaus, Euryptera, Oxylymma, AmpMonthe, Phyma- todes, Tilloclytus , Amphysotes , Eucharassus , Zenochloris , Callopis , Elytroleptus^ Corynellus , Scythroleus. Aegoides, Par7nena, Mecynome, Bisaltes, Ataxia, Euteleuta, Aletretia , Acestrilla , Unelcus , Diliolop/ms, Euprmyiera, Allaeoscelis , Poliaenus, Sa- rillus , Ectencolus , Pogonillus , Penessada , Eurycallinus , Omosarotes , Myrmolamia, Lamiessa , Glypthaga , Ischioloncha , Cacostola , 'Kenofrea , Sychnomerus , Amblysa- phes , Leiopus , JLenostylus , Eutrichillus , Eucharitohis , Sphenopsilus, Carpheolus, Bactriola, Tetrops, Aerenicopsis. Anhangsweise sind einige südamericanische Ar- ten beschrieben. Sehr zahlreiche Arten und Gattungen, deren Anführung zu weit führen würde, werden besprochen. Abgebildet sind 230 sp. , davon mehr als 200 neu. Lameere {^) verzeichnet 13 von Fromont in Paraguay gesammelte Longicornier, darunter Hammatochoerus 1 n. Waterhouse (^) bildet ab T 154 Symphyletes torquatus , Rhytipliora argus , Agnia eximia, Cercopsius tricinctus, Pen- thea scenica, X.ynenon larvatus Pasc; T 157 : Tmesistemus lotor, Rhytiphora Dal- lasii Pasc, Dioristus albolateralis Waterh. : T 161 : Thoris eburifera , Phoracantha hospita, Tryphocaria Mastersi Pasc und Demelius semirugosus Waterh. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 317 Acanthoderes purulensis n. Fig. Guatemala, polystictus n. Fig. Panama, umbratus n. Fig. Guatemala p 379, arietis tx. Fig. Guatemala p 380 ; Bates — Borret n. Mexico; Duges (^) p 47. Acestrilla n. prope Asyngenius, yninima n. Fig. Guatemala, Panama; Bates p 350. Acyphoderes velutinus n. Fig. Guatemala, sMa?;is n. Fig. Mexico; Bates p 290. Adeius consors n. Guatemala, Panama, Rio de Janeiro p 342, curtulus n. Panama, postilenatus n. Guatemala, Panama^ mucoreus ü. Panama p 343 , hacillarius n. Fig. Guatemala, Panama, nitens n. Fig. Panama p 344; Bates. Aegoides calligrammus n. Panama; BatCS p 331; cfr. Phaedimus et Trachyderes. Aegosojna [Megopis] Lacordairei u. Mauritius; Lameere (^) p 12. Aerenicopsis n. verwandt mit Aerenica und Autodice p 427, Championi n. Fig. Pa- nama; Bates p 428. Agalissus quadrimaculatus White = melaniodes var., gratus = clytoides; BateS p 314. Agelasta polyspila n. Sumatra; Pascoe (^) p 50. Almnpyris cretaria n. Mexico p 431, (?) suhcarinata n. Panama p. 432 ; BateS. Alcidion privatum Pasc. var. penicillare n. Guatemala, Nicaragua; Bates p 394. Aletrctia pulchra Vi. Fig. Panama; Bates p 350. Alloeoscelis n. prope PoUaenus, leptis n. Panama; Bates p 358. Alosterna talychensis n. Lenkoran, cJirysomeloides var. suhvittata n. Suram-Paß ; Reitter (i^) p 391. Alpkinellus carinipennis n. Mexico ; Bates p 391. Amhlysaphes n. prope Sychnomerus et Acanthoderes p 381 — striatus n. Fig. Guate- mala p 382 ; Bates. Amphicnaeria quinquevittata n. Fig. Guatemala, Panama; Bates p 349. Amphionthe brevicollis \\. Fig. Mexico; Bates p 291. Amphionycha Druryi und bifasciata Localformen der spectabilis Drury p 429, serici- pennis n. Fig., chionides n. Fig. , bicarinata n. Fig. p 430, pulchricolUs n. Fig. Guatemala, ocreata n. Panama p 431 ; Bates. Ancylocera cribricollis n. Mexico ; BateS p 314. Aneßus calvatus n. Arizona; Horn l^^) p 132. Anisopodus pusillus YSiY., nig^-isparsus n. Guatemala, Panama p 398, dispar n. Fig., nigripes n. Fig. Panama, degener n. Mexico p 399; Bates. Aphysotes n. inter Diphyrama et Orodes p 307 — tubericollis n. Fig. Panama p 308; Bates. Apilocera Hoegei n. Mexico, magna n. Fig. Guatemala p 305, seulpticollis n., reti- culata n. ibid., cleriformis n., cribellata n. Panama p 306, rubella n. Fig. Gua- temala p 307 ; Bates. Apriona tigris Thoms. non = punctatissima Kaup ; Ritsema (^^) p 128. Artinspaza formosa n. Nord-Borneo , EUopura p 55, bicolor n. Andamanen p 56 ; Pascoe (2j. Asemolea purpuricolUs n. Fig. Panama; Bates p 423; cfr. Callia. Astynomus eucharis n. Fig. Panama ; Bates p 418. Atelodesmis piperita n. Mexico; BateS p 352. Atrypanius irrorellus n. Guatemala, Panama; Bates p 411. Bactriola n. prope Soepiseuthes et Eumathes, vittulata n. Fig. Panama, Brasilien p Ali, pauperctila n. p 422 ; Bates. Batocera Whitei Kaup = gigas\)x?i^. p 103, ferruginea Ihom.'S,. = javanicaTh.om^. p 103, irregularisYoW. zu Abatocera [Megacrioides], ebenina Voll. — Poyli ÜOT^e, Fabricn Thoms. = guttata YoW. p 106; RitseiTia (^). Brachyta Solskyi Kr. var. Pochrofka; Heyden (f*) p 303. Caccophrissus n. prope Hypermallus, pauper n. Fig. Mexico; Bates p 252. Cacostola rugicolUs n. Mexico; Bates p 370. 318 Arthropoda, Callia mhiuta zu Asemolea p 423, albicornis u. Fig. Panama, amhigua n. Mexico, [Mimolaia] calopterona n. Panama, (id.) Buckleyi u. Bolivia ; BatGS p 424. Callichroma melancholica var. Guatemala j)292, novella n. Nicaragua, buprestoides n. Mexico p 293; Bates. Callidium simjdarium u. Namagan ; Heyden (^") p296 — [Lioderes) TürM n. Cilicien, Gülek; Gangibauer (2) p 517; cfr. Liodenna. CalUsphyris Schythei Phil. = semicaligatus Fairm. ; Fairmai TG (^) p 61. Callopisma cribellum n. Fig. Panama; Bates p 315. Canidia cfr. Dectes. Carneades Championin. Fig. Panama; BateS p 4 20. Carpheolus n. mit Oedepeza und Chaetanes nahe verwandt, suhlineatus n. Fig. Pa- nama ; Bates p 410. Carterica optata var., pygmaea var. Panama ; Bates p 429. Cereopsius arliter n. Labuan p 50, spilotus n. ibid.^ satelles n. Sarawak p 51; Pascoe p). Ceresium coronarium n. Buru p 53, rotundicolle n. Ceylon p 54 : PaSC08 i^). Chalastinus Chamjnoni n. Fig. Panama; Bates p 374. Championa ctenostomoides n. Fig. Mexico; BateS p 315. Choriolaus n. prope Ophistomis et Euryjytera., aegrotus n. Mexico p 283, lutescens n. Fig., nanus n. Fig. ibid p 284 ; BateS. Cirrhicera Sallaei var. panamensis n. Panama ; BatGS p 429. Cleozona pulchra var. rußpes n. Mexico; BatGS p 307. Cleroclytus collaris n. Kouldjä ; JakOWlGff {^] p 290. Clytanthus ochrozona n. Fig. Guatemala; BatGS p 299. Clytarlm ^h2iY\i =^ Plagithmysus Motsch ; Sharp (*) p 75 — Blackburni n. Fig. p l^b, ßlipes n. p 196; Hawaii, Manna Loa; Sharp (^') p 197 — Blackhimi Sharp = ? Plagithmysus pulverulentus Motsch. ; Horn ("] p 197. Clytellus olesteroides n. Andamanen; PascOG (^) p 56. Clytus arietis Typus der Gattung; Gozis (^) p 279 [quod non Ref.] — [Xylotrechus) namaganensis n. Namagan; HeydGn ['^^) p 298 — annularisY. var. teutonus n. Sumatra, Celebes; Schaufuss p 20 f. — exsanguis Chevr. = acutus Germ, p 104, favielicus Burm. gute Art, elongatus Chevr. = multiguttatus Burm. = proximus Gory p 105; Berg P). Colobothea aleata n. Nicaragua, Panama; BatGS p 420 Fig. Cometes exiguus n. p 275, hilaris n. Fig., festivus n. Fig., venustus n. Fig. Panama p 276; BatGS. Corynellus n. prope Crioprosojnis et Fteroplatus p 318, mimulus n. Mexico, ochraceus n. Fig. Panama; BatGS p 319. Coscinedes n. Piezocerinae p 258, gracilis n. Fig.; Mexico, Panama; BatGS p 259. Cosmisofna retictilatum n. Mexico; BatGS p 311. Crioprosopus lateralis n. Texas; LGCOntG (') p 22 — cacicus n. Colombien p 319, divisus n., Championi n., [iridescens Bat. nee White), basileus n. Mexico p 320, lampros n. [tricolor Bat. nec Waterli.) Panama; BatGS p 321. Crossidius discoideus n. Idaho, Arizona; LGCOntG (') p 23. Cur ius panamensis n. Fig. Panama ; BatGS p 268. Cyllene panamensis n. Panama; BatGS p 295. Cymaterus n. proj)e Erythrus, torridus n. Nord-Borneo, Ellopura ; PascOG (^) p 55. Dectes mexicanus , spinicoriiis, balteatus und cincticoriiis Thovns. zu Canidia., BatGS p 409. Deliathis nivea var. detersa n. Costa Rica, Panama ; BatGS p 338. Deltaspis rubens n., moesta n., (?) virens n. Mexico; BatGS p 323. Dendrobias basalis Dup. = mandibularis var. ; BatGS p 331 . 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 319 Desmiphora scapularis u., farinosa D. Fig. Panama; Bates p 351. Diallus guttatus n. Kaioa, Batcliian; Pascoe (^) p 51. Dihammophora hisptcia n. Mexico ; BateS p 308. Düiolophus n. , Apodasyinae, i^roj^e Eupogonius , vexator n. Fig. Guatemala; Bates p 355. Distenia Pryeri n. Nord-Borneo, Ellopura ; PaSCOG P) p 57 — Hoegeiu. Fig. Mexico, fulvopicta n. Fig. Guatemala p 271, agriloides n. ibid., cribristernis n. Fig. Panama, ejusd. var. Nicaragua, rugiscapis n. Fig. Panama p 272, spinosa n. ibid., Sallaei n. Fig., limhata n, Fig., fuscula n. Fig. Mexico p 273, simplex n., ptmctive7itris n. Panama, brevicomis n. Fig. Mexico, pictipes n. Fig. Guate- mala, langurioides n. Fig. Mexico p 274 ; Bates. Dorcadion simile Kr. = ? Saulcyi Thoms. var. p 518, Emgel n. p 519, Eugeniae n. p 521, Tripolitza, Morea, insulare Kr. = divisum Germ. var. p 520; Gangibauer (2) — navaricuniMuX?,., mendax 'M.XiX?^., monticola Muls., sMo/aDej., meridionale Muls. xxndi piyrenaeum Germ, selbständige Arten; Rey (^) [quod non Ref.]. Dorcasta longipennis n. Guatemala, Panama p 371, mexicana n., oltusa n. Fig. Mexico, Guatemala p 372 ; Bates. Drycothea sticüca var. lepidiota n., spreta n. (Mexico p 422, parva n., curtula n. P 423 ; Bates. Dymasius vitreus n. Nord-Borneo, Ellopura; PaSCOe (^j p 53. Dysphaga hicolor n. Texas; Horn (^] p 196. Eburia perforata Lee. = siigmatica Chevr. ; Long (^) p 29. Ecteneolus n. prope Colobura p 359, Flohrirx. Mexico p 360 ; Bates. Ectenessa n. prope Periboeum, subopaca n., phthisica n., sexmaculata n. Brasilien p 257, nitida n. Fig. Mexico, Nicaragua p 258; Bates ; cfr. Ibidion. Eleothinus (?) pygmaeus n. Fig. Guatemala, Panama; BateS p 392; cfr. Eutrichillus. Elytroleptus Alfredi Dug. = pallidus Thoms. p 317. longipennis n., eros n. Fig., nigripennis n. Mexico p 318; BateS. Eranafuliginella n. Guatemala; Bates p 428, Esthlogena guatemalena n., mirandüla n. Guatemala; BatGS p 348. Estola fulvitarsis n., prolongata n. Panama p 356, leucosticta n. Mexico, misella n. Brit. Honduras, Guatemala, Panama p 357 ; Bates. Eucharassus n. prope Lissozodes p 308, dispar n. Fig. Panama p 309 ; Bates. Eucharitolus n. prope Lepturges, pidcher n. Panama; Bates p 408. Euderces laevicauda n., cribratus u. p 304, acutipennis n. Fig. p 305, Guatemala; Bates. Eupogonius pauper Lec. = vestitus Say ; Horn (^) p 196 — apicicornis n. Fig. Gua- temala, Panama, scutellaris n. Panama p 352, subnudus n. Guatemala, major n. Mexico, Guatemala, vittipennis n. Fig., ^ae^ws n. Guatemala p 353, comus u. Me- xico p 354 ; Bates. Eupromera glabricula n. Panama ; BateS p 358 Fig. Eurycallinus n. iuter Thallus et Brachychilus p 362, mirabilis n. Fig. Mexico p 363 ; Bates. Eurycephalus variabilis Pasc. = maxillosus Ol. ^, maxillosus Ol. nicht Q^ des Lundi F., sondern gute Art., TFienecM Voll, zu Philagathes \ Ritsema (^^j p 128. Euryptera costulata n. Mexico p 284, Chihuahuae n., mimula n. ibid., sericea n. Pa- nama p 28b, fulvella n. Fig., princeps n. Fig. ibid., patricia n. Fig., longipennis Fig. Mexico p 286; Bates. Eurysthea cribripennis n. Fig. Panama, Colombia. Ecuador; Bates p 256. Euteleuta n. prope Epectasis et Atimura p 348, laticauda n. Fig. Panama, fimbriata n. Süd-Brasilien p 349; Bates. Eutrichillus n. prope Ozineus. Hierher Eleothinus comus; BateS p 397. 320 Arthropoda. Gaurotes maculosus n. Mexico; Bates p 277. Glaphyra semiusta Newm. = Molorchus himaculatus Say var. ; Hom [^^) p 8. Glypthaga paupera n. Mexico, Brit. Honduras; Bates p 366. Gnomidolon laeiahile n. Fig., insulicola n. Fig.; BateS p 260. Gracilia obliquata n. Texas ; Horn ('') p 174. Grammoptera variegata Germ. var. nigrescens n. Deutschland; WgIsB (-) p 423. Hanimatockaerus pactoi' n. Paraguay; LameGre (^) p 61. Harnmoderus granidosus n. Fig., laceratus n. Fig. Mexico p 339, ornaior n. Fig. ibid., Sargi n. Fig. Guatemala p 340 ; Bates. Hemilissa ßaviccmda n. Guatemala; Bates p 25S Fig. Heterachthes aeneohis n. Mexico; Bates p 267 Fig. Heteropalpus acutipennis Buq. zu Coinetes, acutlpennis^Sii. non Buq. (^ i^i qxw. Hetero- palpus; Bates p 276. Hexoplon calligramma n. Mexico ; BateS p 259 Fig. Hoegea n. prope Tylosis p 326, distigma n. Fig. Mexico; Bates p 327. Hornius n. mit Beziehungen zu den Lepturinen und Dorcasominen , Habitus von Teiraopes und Astathes p 61, sulcifrom u. Baie Orange, Feuerland p 62 ; Fairmaire (2), (i^)pl2. Hypermallus collaris Gemm. Har. ? zu Praxithea Thoms. ; Lameere (■^) p 61 — gri- sescensVi. Mexico, Guatemala p 249, subseriatus n. Panama, eximiusn. Fig. Mexico, lanuginosus n. Fig. Guatemala, lo7igissimus n. Fig. Mexico p 250, glabritisculus n. Panama, Brit. Honduras, miselhts n. Guatemala p 251; Bates. Hypexilis n. verwandt mit Gracilia und Exilis, pallida n. Texas; Horn (^) p 173. Hypsioma corniculata n. Nicaragua, Panama; Bates p 365. Ibidion anormale Thoms. wahrscheinlich zu Ectenessa p 257, pleurosticium n. Fig., leucozona n. Fig., validicorne n. Fig. Panama p 261, integripenne n. Fig., latevitta- tum n. Fig. Mexico, bilineatum u . Fig. Guatemala p 262, tenuatumn. Fig., Mexico, mexicanum = textile var. p 263, textile var. alacre n. Fig. Mexico, Guatemala, var. sericansn. Panama, ventricosum n. Fig. ibid. p 264, obtusum Bat. var. segre- gatum n. Fig. Mexico, kippopsioides n. Fig., ignobile n. Fig. Guatemala, seminifum n. Mexico p 265, chiriquinum n. Panama, teymispinum n. Fig., asperulum n. Fig. Mexico p 266, virgulatum zu Phormesium p 267 ; BateS. Ironeus mutatus n. Fig. Mexico; Batss p 255. Ischioloncha lineata n. Fig. Guatemala, Costa Rica ; Bates p 369. Ichnocnemis sexnalis n., coerulescens n. Mexico; BateS p 328. Isomerida cinctiventris n. [cinctipennis Fig.) p 431, explanata n. Fig. Panama p 432; Bates. Lagochirus binumeratus Thoms. var. V-album, n. Brit. Honduras, Guatemala, Nicara- gua, Costa Rica, Panama, integer n. Mexico, Guatemala; Bates p 384. Lamiessa n. Saperdinae, aberrante Gattung mit Beziehungen zu den Pogonochae- rinen und Eupogoninen p 364, eumolpoides n. Fig. Guatemala p 365 ; Bates. Leiopus naeviicornis n. Mexico; BateS p 393. Leptocometes curvatus n. Mexico; Bates p 396. Leptostylus laevicauda var. chiriquinus n. Panama p 386, albescens n. Fig., retrorsus n. Fig. ibid., diffiisus n. Fig. Mexico, Guatemala, signaticauda n. Fig. Brit. Hon- duras, Guatemala p 381 , fuligitieus n. Fig. ibid., phrissomimus n. Fig., zonatus n. Fig. Panama, albiciiictus n. Mexico p 389, x-griseus n. Fig. Guatemala, quintalbus n. Fig., petulans n. Panama, ochropygus n. Guatemala p 389, angulicollis n. ibid., dubitans n. Mexico p 390, aspiciens n. Fig. Mexico p 391; Bates. Leptiira siciila n. Sicilien p 515, 77iontana Mnls . var. Leuthneri n. Syrien p 516; Gangibauer (^j — macuUcomis var. simphnica n. Simplon ; Fairmaire r*-^) p 317 ; Rey (■''] p 325 — hybrida n. Frankreich, ochracea n. Savoyen, Grande Chartreuse; 8, Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 321 Rey (*) p 277, (5) p 326 — picticomis n. Greta; Reitter (i^) p 398 — nüidicollis Hörn = t?«'Äe.r Newm. p 8, a//ec^a Newm. und/?a?//>erc?/fo. Newm. = sphaericollis Say var., saticia Lee. und nana Newm. = exigua Newm. var., rußceps Lee., similis Kirby und rhodopns Lee. = subargentata Kirby var. p 9 ; Horn (^*^j — anomala n. Fig. Guatemala ; Bates p 279. Lepturges palUdulus n. Fig. Guatemala p 400, collinus n. Fig. ibid., chariclesn., late- guttatus n. Fig. Panama p 402, ornatissimxis n. Fig., chariüus n. Fig. Panama, calUzonus n. Fig. Guatemala p 403, etqjrepes n. Mexico, histrionellus n. Fig., trivii- tatus n. Fig., plurisirigostts n. Fig. Panama p 404, literatus n. Fig. Mexico, ab- stersus n. Brit. Honduras, nigridorsis n. Fig. Guatemala, phjsoderus n. Panama, Guatemala p 405_, Xantho n. Fig., (?) rt/fulus n. Fig. Guatemala, ampUcollis n. Fig. Panama p 406, mu7idulits n. Mexico p 407; Bates. Lioderina n, subg. für Callidinm lineare Hampe; Gangibauer \^) p 517. Liopus centralis n. Arizona; LeCOnte (^) p 24. Lissnnotus multifasciatus var. puncticollis n. Californien, Mexico ; Bates p 333. Lophopaeum saronohim n. Nicaragua, Panama, W-ßavum n. Fig. Panama p 395, spinipenne n. Fig. ibid. p 396 ; Bates. Lycidola tmicolor n., isabellina n. Fig. p 434, eximia n. Panama p 435 ; BateS. Lypsimena californica n. San Diego, Californien ; Horn [''] p 194. Mallosia imperatrix n. Bloudan, Antilibanon; Abeille (^] p 140. Mannophorus Forreri n. Fig. Mexico ; BateS p 327. Mecometopus remipes n. Fig., solidico?-nis n. Panama, melanion n. Mexico p 300 ; Bates. Mecynome aenescens n. Fig. Guatemala; Bates p 335. Merionoeda gratiosa n. Fig. Mexico; BateS p 287; cfr. Stenoptrelhis. Meroscelisus opacus Buq. = apicalis y^\x\iQ (^, Servillei Thomä. = violaceus Serv. (J'; Lameere (^j p lo. Mesosa inco?igrua n. Nord-Borneo, Ellopura ; Pascoe (2) p 52. Metaleptus Batest u. Arizona; Horn C) p 174. Mlmolaia n. subg. für Callia halticoides Bat., Bucleyi n. und calipterona n. p 424 ; Bates. Monilema spoliatum n. Californien p 186, Ulkei n. Dimmit County, Texas p 188; Horn ['') — ebeninum n. Mexico; BateS p 336. Monohammus minor Lec. = titillator F. p 192, mutator Lec, marmoratus Lee. nou Kirby und clamator Lec. = maculosus Hald., oregone?isis Lec. = scutellatus Say p 193; Horn (^). Miiscidora tricolor Thoms. = ? Deltaspis nigripennis Bat. ; BatOS p 329. Myrmolamia n. prope Cyrtinus p 363, opacicollis n. Fig. Guatemala, penicillata n, Panama p 364; Bates. Neoclytus non = Plagithmysus\ Hom (") p 197 — beltianus n. (ieÄas? Bat. nec Chevr.) Fig. Nicaragua p 301, Championi n. Fig. Guatemala, purus n. Fig. Mexico, Gua- temala p 302 ; Bates. Nephalius. Die von Bates als Nephaliiis aus Central- America aufgeführten Arten zu Periboeum; BatOS p 254. Nyssodrys infimus n., exilis n. Panama p 412, caudata var. ocellata n. Central-Ame- rica, porifera n. Fig. Panama p 413, inclusa n. Fig. ibid. p 415, vigintiyuttata n. Fig., tmivittis n. Fig., polytaenia n. Fig. ibid. p 415, decemguttata n. Nicaragua, sulp/iurescens n. Panama, Buckleyi n. Bolivia p 416, concimm n. Fig. Panama p417; Bates; cfr. Oxathres. Obereina n. subg. für Phytoecia vittipennis Reiche, nivea Kr., rubricollis Luc. ; Gangl- bauer (2) p 524. Obrium liturafum n. Fig. Guatemala p 268, angulosum n. Fig., cordicolle n. Fig. Zool. Jaliresbericht. 1885. II. 21 322 Arthropoda. Panama, piperitum u. Panama p 269^, clerulmn n. Fig. ibid., arciferum n. Fig. Guatemala, cruciferum n. Fig., rußcolle n. Mexico p 270, crtbripemie n. Fig. Guate- mala, ejusd. var. ? Mexico p 271; Bates. Ochresthes wiibratilis n. Fig. Guatemala p 297, sigmoideus n. Fig. Mexico, zehratus n. Fig., litura n. Guatemala p 298 ; Baies. Octoplon candidum n. Panama ; Bates p 261. Odontocera ftiscicornis n. Mexico, apicula n. Fig. Panama; Bates p 289. Ommata cyanea n. Mexico, iodes n. Panama p 288, Sallaei n. Fig. Mexico p 289; Bates. Oncideres texana n. Texas; Horn (^) p 195 — tessellata var. vestita n. Mexico, ejusd. var. Guatemala p 366, seyiilis n. Mexico, Nicaragua, ocellaris n. Guatemala, rhodo- sticta n. Mexico p 368 ; Bates. Ophistomis laevicollis var. Mexico, Guatemala, Panama, puhipennis n. Mexico, Gua- temala p 279, lachrymans n. Fig., melampus n. Guatemala, brachialis n., Sallaei n. Mexico p 280, histrio n. Fig. Guatemala, salfator n. Fig. Panama p 281, pec- toralis n. Mexico, /e& n. Fig. Panama, xantho u. Mexico p 282, hirsutus n. ibid., (?) fulveohis n. Fig. Guatemala p 283 ; BateS. Oreodera grapMptera n. Panama, hispida =fasciculosa; BateS p 376. Onjchodes femoraUis n. Macassar ; SchaufuSS p 206. Oxathres pictuhis zu Nyssodrys ; BatoS p 409. Oxoplus maryinaft/shec. var. Lower California ; LeCOnte (^) p 23 — Jocosusn. Colo- rado, Arizona; Horn {^) p 175. Oxycoleus Lac. = Mermioeda Pasc. ; Bates p 287. Oxyglymma C/iampwni n. Fig. Guatemala p 288 , coeruleocxncta n. Fig. Panama p436; Bates. Ozineus n. p 396, angulistigma n. Fig., moestits n. Fig. Panama p 397 ; BateS. Pachyta rugipennis Lec. = [Toxotus] )-ugtpennis Newm.; Hom (^'^j p 9 — costa?-icensis n. Fig. Costa Rica; Bates p 277. Fanny chis atripennis n. Mexico; BateS p 427. Parandra Villei n. Ecuador; Lameere (^) p 11. Parmena villosa n. Mexico; BateS p 334. Parmenonta fulvosticta n. Mexico; BateS p 341. Parysatis niveisparsa n., fulvifrons n. Fig. Panama p 346, illita n. Guatemala p 347 ; Bates. Pelargoderus semitignms n. Fig. Sumatra ; Ritsema {^^) p 44. Pemjiteurys n. prope Tilloclytus et Diphyrana^ sericans n. Fig. Guatemala; BateS p 304. Penessada fuhginea n., albosignata n. Fig. Guatemala p 362, (?) asperata n. Mexico P 363 ; Bates. Periboeum cribricolle n. Fig. Mexico p 253, reticolle n. Fig. ibid. p 254; BateS. Periergates chiriqueJisis u. Panama p 368, Badeni n. Mexico ? p 369 ; BateS. Phaea rosea n., auricapüla n. Panama, phihisica var. Mexico p 425 ; BateS. Phaedinus Debauvei Guer. zu Acgoides ; BateS p 331. Phaohis 3Iacleay{ FüBC. = Jotherimn metallicum Pasc. ; Lameere ("^) p 13. Phryneta semirasa n. Zambese; Dohrn (^) p 140. Phrynidms asper n. Guatemala; BateS p 334. PInjmatodes ater Vi. Buffalo ; LeCOnte (*) p 22. Phytoecia [Coptosia] Faustin. Persien p 521, {Helladia) adelpha n. Syrien, /«rmos« n. Schabrud, Astarte n. Kleiuasien, [Obereina] vittipe?i7iis Reicbe var. Leuthneri n. Syrien p 523; Gangibauer (2). Pie-Mcera monochroa n. Mexico, Guatemala; Bates p 258. 8. Hexapoda. VIII. Colepotera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 323 Flagiosarus literatus n. Guatemala p 382, melampus n. Fig. ibid., ejusd. var. Fig. Panama p 383; Bates. Plagithmysus non = Neoclytiis, pulverulentiis Motsch. wahrscheinlich nicht von Cali- fornien, sondern von den Hawaii-Inseln; Horn C') p 197 ; cfr. Sharp (^). Platyarthron semivittatum n. Fig. Panama, laterale n. Nicaragua; Bates p 316. Foffonillus n. prope Rhopaloscelis, mermis n. Mexico, suhfasciatus n. Fig. Guatemala P 360 ; Bates. PoUaeniis hircinus n. Mexico ; BateS p 358. Polyarthron Komaroffi n. Merw, Turcmenien ; Dohrn (^) p 64 — Bienertin. Persien; Heyden (») p 3ii. Psalklognathus Thomsoni nom. n. für modestus Thoms. non Fries p 9, Umbatus Taschbg. [casianetpennis Thoms.) = ? WalUsi Taschbg. immaturus p 10; La- meere (2). Pseudomyrmecion n. prope Gracilia, Habitus von Clytus massiliensis p 131, ramalium n. Algier, Foret de l'Edough p 132 ; Bedel [^). Psyrassa Sallaei n. Fig., tympanophora n. Fig. Mexico; BateS p 255. Pterichthya obliqua n. Mexico; Bates p 345. Ptericoptus fuscus n. Mexico ; Bates p 345. Pteroplatus divtstis n. Dallas, Texas, rußpennis n. Arizona p 23, apicalis n., ignitus n. ibid. p 24; Leconte (^) — rußpemiis Lee. = "f pnllidus Thoms. var. ; Horn (') p 24 — octocostatus , pallidtts, ignitus Lee. und apicalis Lee. zu Elytroleptus ; Bates p 317. Ptychodes candidus n. Panama; Bates p 337. Purpuricenus glohulicollis Muls. = Köhleri var.; Gozis (^) p 279 — dimidiatiis n. Yreke, Californien ; LecontG (^) p 23 — sanguinolentus Ol. zu Philagathes \ Rit- sema (^3) p 128. Pyrodes Caiidezei n. Ecuador; LaiTieere (^j p 12. Rhopalopachys morosus Chevr. = Neoclytus irroratus Lec. ; Hom (^) p 197. Ehopalophora niyriventris n. Guatemala, p)orosa White = longipes Say p 310 ; BateS. Ronialeum procerum Lec. = simplicicolle Hald., seminitidum n. Arizona; Hom (^^j p 130. Sarillm n. prope Poliaenus, pygmaeus n. Fig. Panama; BateS p 359. Scythroleus n. prope Tragidion p 32i, picticor7tis n. Mexico p 325; BateS. Solenoptera parandroides n. Cuba; Lameere (2) p 12. Sotira u. Hesperophanini '^.,flexuosa n. Kaioa, Amboina ; Pascoe (^) p 54. Spalacopsis si(ffnsa Newm. = ? stolaia Newm. Q. ; Hom (^^) p 9 — variegata var. tenuissima n. Mexico, phantasma n. Guatemala; BatGS p 371. Sphaerionillurn n. prope Sphaerion, pictum n. p 256, quadrisignatnm n. Fig. Mexico p 257 ; Bates. Sphenopsilus n. prope Oxathres^ claviger n. Fig. Panama; Bates p 409. Sphenothectis luteicollis n. Mexico; Bates p 329. Steirasto7na larva = histj-ioyiica var. p 377, liturata n. Fig. Guatemala p 378 ; BateS. Stenoptrelhis Bat. = Merionoeda Pasc. ; BateS p 287. Sfenosphenus novatiis n. Cape San Lucas, Lower California p 178, lepidus n. Arizona, dolosNS n. Südwest-Texas, debilis n. Utah p 179; Horn C) — erythroderus n. Mexico, lineatus n., langtirioides n. Guatemala p 313; Bates. Sthenias hmulatus n. Nord-Borneo, Ellopura ; Pascoe (-) p 52. Stizocera Serv. = ? Periboeum; BateS p 253. Strangalia verticalis YQX. Adaliae n. Adalia, Kleinasien; Reitter (^^j p 390. Stromatium signiferum n. Ceylon; PaSCOe (^) p 55. Sybropis n. prope Sybra, frontalis n. Nord-Borneo, Ellopura; PasCOe [^) p 53. 21* 324 Arthropoda, Sychnwnerus n. prope Acanthoderes p 380, hirticornis n. Fig., harhiger n. Fig. p 381; Bates. Taeniotes xanihosüctxis var. zuniknsis n. Guatemala; BateS p 338. Tapeina (?) niidicornis n. Mexico; BateS p 421. Taricanus rninor n. Mexico ; Bates p 368. Tetrac/leiies dmroides n. Doli, Ost-Sumatra; Ritsema (^o) p 44 Fig. Tetrasarus formoms n. Fig. Costa Rica, plato n. Fig. Guatemala ? p 382 ; Bates. Tetropium opacipenne n., atiripilis n. Mexico; BatOS p 435. Tetrops validicornis n. Mexico; BateS p 426. Thryallis grmiulosus n. Guatemala; Bates p 374 Fig. Tilloclytus n. prope Cyrtophorus (= Tillomorpha Chevr. nee Blanch.) p 303, chvipes n. Fig. Guatemala p 304; Bates; cfr. Tillomorpha. Tillomorpha halteata und haematocephala zu Tilloclytus] BatGS p 303. Tmesistermis Rafaelaen. Menado, Nord-Celebes ; Lansberge (^) p 20. Toxotinus longicornis Bat. = [Toxotus] Reini Heyä. ; Heyden (®) p 310. Trachyderes elegans var. eximius n., spinicollis n. Mexico p 333, venustus Newm. = Aegoides Debaiwei jß 331; BatOS — sidcahis Burm. = mo7'io F. var. ; LamGOre (3) p 61. Tragidion licolor n. Mexico ; Bates p 324. Trichophortis Jansoni n. Nicaragua; BateS p 252. Tylosis sellata hec. = macnlata hec. var. ; Hom (") p 176 — ptmcticollis n. [macu- lata Bat. nee Lee), angusticollis n. [sellata Bat. nee Lee.) p 325, sutnralis u. p 326 Mexico; Bates. Tyrinthia biformis n. Fig. p \'i)'6 ^ photurina n. Fig. Panama p 434; Bates. Unelcus lineatiis n. Fig. Guatemala, Mexico; Bates p 354. Xenofrea n. Crossotini ?, Gen. Eumimetes affinis, trigonalis n. Peru, Chanchamayo, zonata n. Amazonas, anomala n. Panama p 374, areolata n. Fig. ibid. p 374; Bates. Xenostylus n. prope Alcidion p 394, sublineatiis n. Fig. Panama p 395 ; Bates. Xixuthrus costatus n. Santa Anna, Salomon-Isl. ; Waterhouse (^) p 383. Xoanodera amoenan. Ceylon; PaSCOe ("^) p 53. Xylotrechus decolor Thieme = cimeipennis Kr. = hircus Gebl. ; Heydetl (^) p 310. Zenochloris n. prope Chrysoprasis p 311, paradoxa n. Fig. Panama ; BateS p 312. Zographus alboguttatus n. Guelidi; Fairmaire (*^) p 9. Zonoplerus suspectus n. Fig. West- Java, Bandong; Ritsema C^) p 125. Familie Chrysomelidae. Subfamilie Eupoda. Harrach (^) verzeichnet die Nährpflanzen von 25 deutschen Z>onae/aarten. Lug- ger bespricht die Verbreitung von Crioceris duodecimpunctata L. in Nord-America und ihr schädliches Auftreten. Thomson (') gibt eine neue Characteristik von Donacia thalassina, impressa, platysterna^ brevicornis und einer 5. in diese Gruppe gehörigen neuen Art. Fauconnet gibt Bestimmungstabellen der französischen Criocerinen: Syiieta 1, Zcugophora 4, Lema 5, Crioceris 19. Heyden (*^) verzeich- net Donacia sparganii Ahr. von Pochrofka als neu für das Amurgebiet. Jacoby (^) verzeichnet aus Japan Haemonia 1 n., Donacia 4, 2 n., Syneta 1, Lema 2, Crio- ceris 2, Pedrillia 4, 3 n. Weise ('^) verzeichnet von Portorico Lema 2, 1 n. Crioceris Letcisi n. Fig. Nikko p 194, orientalis n. Sapporo p 195 ; JaCOby (^) . Donacia brevitarsis n. Nördl. Europa; ThomSOn (') p 149 — [Platetnnaris) Weisei n. Sibirien; Duvivier (•*) p 116 — graciUpes n. p 191, constricticollis n. Fig. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 325 JuDsai p 192, sericea L. var. stbirica Solsky ? Nikko p 193 ; JaCOby ('*) — Pro- vostiiu. Peckiiig; Fairmaire (®) p 64 — lucida Lee. = cincHcomis Newm., cata- ractae Newm. und rxigifrons = ciiprea Kirby var. ; Horn \}^) p 9. Haemonia japcma n. Bukenji ; Jacoby (^) p 190 Fig. Lema nigra n. Gimont, Gers; Delherm (^j p 70 — balteata n. Arizona, concolor n. Las Vegas, Nen-Mexico; Leconte (^) p 24 — nigripes n. Portorico; Weise f^^l p 145. Mecynodera THcHöTOtn. Queensland ; Waferhouse (^) p 342. Orsodacna costata'&Q^m.., rußcollis l^^ewm., inconstajw Newm., Childreni K.ivhj , luc- tiiosa Lac. = atra Ahr. var. ; Horn (^'^j p 9. Fedrillia nigricollis n. Wada toge, Fukushima p 195, varipes n. Nikko, Chiuzenji p 196, unifasciata n. Fig. Nikko p 197 ; JaCOby (*). Syneta Adamsi Baly var. Japan; Jacoby (^) p 193. Subfamilie Camptosomata. Weise {^) p 424 spricht sich gegen die Berechtigung der Gattung Disopus Redtb. aus und gibt neue Unterschiede zwischen Crypiocephalus sericeus L. und am-eolus Suflfr. in der Bildung des Pygidium an. Letzner {^^) bespricht die schlesischen Varietäten von Coptocephala ruhicunda Laich. Poujade (^) verzeichnet CoptocepJiala tetradyma Küst. von Fontainebleau. Heyden [^) verzeichnet Gynandrophthalma iibialis Br. und Fachyhrachys prohus Weise von Pochrofka als neu für das Amur- gebiet. Jacoby (^) verzeichnet von Japan: Chlamys 2, In., Crypiocephalus 8, 4 n., PachybracJiys 1. Verf. bespricht Chlamys spilota Baly, Crypiocephalus nobilis Kr. (Fig.) und Pachybrachys erudiia Baly. Weise (^^j verzeichnet von Portorico: Crypiocephalus 7, 5n., Pachybrachys 1 n. und bespricht Cryptocephalus niyrocinc- tus Suflfr. Chlamys japonica u. Kiga , Fukushima; Jacoby (*) p 198 Fig. — Holubi n. Südl. Central-Africa ; Dohrn P) p 148. Clyira opaca Kosh. = [Otioccphala] quadrinoiata F. ; Betlel (*) p 89 — appendicina Lac. var. Pochrofka; Heyden C') p 304. Coscinopiera do-salis n., bifaria n. Arizona, canella n. Süd-Californien; vitiigera Lee. var. Colorado, Arizona; Leconte (^) p 25. Crypiocephalus acupicius Mars. = acupunciaius Fairm., fulguriius Mars. = fulgurans Fairm. ; Bedel (*) p 89 — sericeus L. var. inirusus Weise = var. zambanellus Mars. ; Weise -p) p 424 — pallescens Kr. var. Pochrofka; Heyden ^] p 304 — llmbaiipennis u. Shimonosuwa p X^'i, partiiusw. Fig. Wada toge p 100, nigrofa- scialus n. Nowata, Matsuida, Fukiu, Oyama, Wada toge p 200, difformis n. Fig. Nikko p 201 ; JaCOby (^) — elUpsoidalis Casey = inserius Hald. ; Horn (loj p HO — subelaius n. {elait/s SuflTr. uon F.) Cuba; Tappes p 41 — irisiiculus n. p 147, Kriigi u. Fig. p 148, stolidus n. Fig. p 149, perspicax n. Fig. p 151, nothus n. Fig. Portorico p 152; Weise (^^] — inierstitialis n. Madagascar ; Jacoby [^) p 222. Etiryscopa viiiaia \jQQ, . var. Arizona, ieconto' Crotch var. Sttd-Californien ; Leconte (i)p25. Gynandrophihalma iibialis Br. var. Chabarofka ; Heyden [^) p 302. Labidosiomis suhfasciaia n. Hamarat am caspischen Meer p 313, Reiiierin. Lenkorau P 314; Weise (ß). Megalosiomis unicincia n. Venezuela, Caracas; Lefevre (^) p 149. Oiiocephala forcipifera Lac. und Warioni hef. wahrscheinlich Varietäten der quadri- noiaia F. ; Bede! (^j p 89. Pachybrachys probus Weise = ? sericans Suflfr. var. ; Heyden C') p 304 — Doeniizi 326 Arthropoda. Har. = ? erudita Baly ; Jacoby (^) p 203 — mendicus n. Portorico ; Weise ('^j p 153 Fig. Saxinis apicalis n. Arizona ; Leconte (^) p 25. Stylosomus xantholus n. Montpellier; Ray (^) p 274. Subfamilie Cyclica. Sectio Eumolpini. FOPbes (1-1. Rep. St. Ent., Titel s. u. Abschn. XIII) bildet die Entwicklimgs- stadien von Scelodonta pubescens ab. — Lefevre (^) liefert einen systematischen Catalog der Eumolpinen mit zahlreichen n. sp. und mehreren n. gen. Die Sec- tionen und Genera sind diagnosticirt , zu den 23 Sectionen von Chapuis werden noch 2 hinzugefügt : Cheiriditae und Pseudocolaspitae. Die Synonymie ist sehr übersichtlich angegeben, indem jede sp. , die nachträglich in eine andere Gat- tung gestellt wurde , anhangsweise auch innerhalb der ursprünglichen Gattung aufgeführt wird. Die Reihenfolge der Sp. ist wie im Münchner Catalog alpha- betisch. Jacoby (*) verzeichnet aus Japan: Oomorphusl^ 1 n., Leprotes 1 n., Demotina 1 n., Nodostoma 3 n. Leconte (^) gibt eine Bestimmungstabelle der nordamericanischen Graphops [Heteraspis] 8, 4 n. Horn (^) gibt eine Bestimmungs- tabelle der nordamericanischen Ch-ysochus 3, in. Weise (^^) verzeichnet von Portorico: Lamprosoma 1, Colaspts 1, Metachroma 1 n. Ahirus rubripes n. Ceylon, tubercxdipennis n. Luzon, Mindanao; Lefevre (-) p 114. Agbalus elongatxis n. Ecuador, ßavipes n. Peru p 21, peruanus n. ibid., rutilans n. Colombia, tarsalis n. Cumana p 22; Lefevre (^) . Agetimis nom. n. für Agetus Chap. (bei den Crustaceen vergeben) ; Lefevre (®) p 43. Agrianes cyanicornis n. Brasilien; Lefevre (®) p 14. Alethacius nom. n. für Aletes Chap. (bei den Mollusken vergeben) p 42, geniculatus n. Ecuador, proUxus n. Bogota p 43; Lefevre (^). Aporistus nom. n. für Aporus Lef. (bei den Hymenopteren und Coleopteren ver- geben); Lefevre (*) p 156. Argoa nom. n. für Argalis Chap. (bei den Hemipteren vergeben) ; Lefevre (^) p 116. Aulexis ßavopilosa n. Philippinen p 76, hiimilis n. Insel Juthia, luzonica n., puberula n., pusilla n. Philippinen p 77 ; Lefevre (*). Balya Jacobyi n. Mendoza; Lefevre (^) p 150. Callipta nom. n. für Calliope Weise (bei den Dipteren, Lepidopteren und Crusta- ceen vergeben) ; Lefevre [^) p 125. Campilochira metallica n. Brasilien; Lefevre (^) p 41. Choris caerulea n. Bogota; Lefevre (^) p 23. Chrysochus robustus n. Arizona; Horn C') p 156. Chrysodina collaris n. Brasilien, gracilis n. Buenos Aires, jucunda n. Peru, laevi- collis n. Carthagene, opacicollis n. Brasilien p 7, parvula n. Colombia, reticulata n. Brasilien, tarsalis n. Peru p 8 ; Lefevre (^). Chrysopida aurovillasa n., curta n., depressicollis n., pubipennis n., Semperi n. Phi- lippinen; Lefevre (^) p 99. Cleorina n. pi'ope Thyrasia p 143, aulica n. Batavia, castanea n., morosa n. Philip- pinen, yan^Ama n. Hongkong, metallica n. Java, nobilis n. Ostindien p 144, pul- chella n. Australien, Cooktown, sumatrensis n. Sumatra, Mt. Singalang, tibialis n. Philippinen p 145; Lefevre (^). Cleptar n. inter Edusia et Abirus, inermis n. Queensland, rußmanus n.PortDenison; Lefevre (^) p 113. C7yj5eo?ana n. Metachromini, prope ÄÄy/»anc?a, ^>^omc{can. Philippinen; Lefevre (^)p 126. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 327 Colaspis arizonae Cr. var.; LeCOnte (') p 27 — aclusta n. Bahia, aeraria n. Colom- bia p 31, cyanea n. Bahia, Dugesi n. Tupataro p 32, ßavicans n. Nord- America, gemellata n. Colombia, Ost-Peru p 33, pectoralis n. Brasilien p 34, j)ropinqua u. ibid., speciosa n. Cumana, Venezuela p 35, tibialis n. Brasilien p 36, corrugataxi.. Amazonasp 168; Lefevre (^). Colaspoides Martini vl. Tonkin ; Lefevre (*) p 66 — femoralis n. China, hypoxantha n. Amazonas p 158, nigromaculata n. Brasilien p 159, vulgata \\. Bahia p 160; Lefevre (*) — simjüicipennis n. Australien, Somerset p 20, nigritarsis n. Sumatra, Mt. Singalang p 21 ; Jacoby (^). Colasposoma annamita n. Cochinchina, asperatum n. ibid., crihratum n. Caffraria p 104, Gounellei n. Ramnad, Hindostan, ovulum n. Natal p 105, pilosum n. ibid., rugiceps n. Philippinen, serratulum n. Malacca p 106, velutinum n. Senegal, villo- sulutn n. Coromandal, Tanjore p 107; Lefevre (^) — regularisu. Neu-Guinea, Fly River; Jacoby (') p 21. Corynodes rutilans n. Malacca; Lefevre (^) p 149 — Chapuisi n. Pulo Penang p 147, egregius n. Philippinen, gibbifrons n. Siam p 148, simplicicornis n. Philip- pinen p 150 ; Lefevre (^) — cribratellus n., coerulescens n. Niams-Niams p 82 ; Fairmaire ('<^) p 82. Corysthea impressicollis n. Ecuador; Lefevre (^) p 55. Coytiera strigatipennis n. Brasilien; LcfCVre (^) p 167. Demotina bipunctata n. Kobe ; JaCOby (^) p 204. Dolichemus nom. n. für Dolometis Har. (bei den Vögeln vergeben); Lefevre (®) p 39. Edusia nom. n. für Edusa Chap. (bei den Mollusken vergeben); Lefevre (*) p 112. Ennodius nom. n. für Enipeus Cast. (bei den Mollusken und Hemipteren vergeben) ; Lefevre (^) p 90. Eryxia virescens n. Abyssinien ; Lefevre (^) p 82. Eupales nom. n. für Pales Redtb. (bei den Dipteren vergeben); Lefevre (^) p 50. Eurypelta nom. n. für Euraspis Chap. non Blanch.; Lefevre C^) p 118. Eurysarcus nom. n. für Polysarcus (bei den Orthopteren vergeben) p 24, rufinus n. Bahia p 166; Lefevre («). Eurysthenes nom. n. für -E'wry^ws Chap. (bei den Mollusken vergeben); Lefevre (^) p 88. Fidia lurida n. Nord-America ; Lefevre (^) p 76. Gastropius n. prope Adorea, insignis n. Ecuador; Lefevre (^) p 167. Graphops beryllinus n. Kansas, obscurus n. Colorado, variatis n. Illinois, Texas, Kansas p 26, simplex n. Texas p 27 ; Leconte ('). Habrophora costulata n. Brasilien; Lefevre (^) p 78. Hemiplatys Chapuisi n. Malacca; Lefevre (*) p 81. Hermesia janthina n. Venezuela, Cumana; Lefevre (^) p 39. Heteraspis Lee. = Graphops Lee.; Leconte (^) p 26 — morosa n. Insel Juthia ; Lefevre (») p 83. Himerida nom. n. für Himera Chap. (bei den Lepidopteren und Dipteren vergeben); Lefevre («) p 90. Ischyrolampra nom. n. für Eulampra Baly nee Chd.; Lefevre (^) p 166. Ivongius tnconstans n. Madagascar ; Lefevre (^) p 141. Lamprosoma vicinum n. Brasilien, St. Katharina; Duvivier (^) p 117; cfr. Oo- morphus. Lamprosphaerus amoenus n. Amazonas p. 9, fulgidus n. Peru, janthinus n. Bogota, ornatus n. Amazonas, unicolor n. Cayenne, venustus n. Bogota p 10, rußpes n. Amazonasp 166; Lefevre ('^). Lepronoia ßilvicornis n. Brasilien; Lefevre (*) p 19, Leprotes pulverulentus n. Fig. Oyama, Kiga, Oguma, Nikko; JaCOby {*] p 203. 328 Arthropoda. Libotes n. inter Teaspes et Agbalus, ater n. Brasilien; Lefevre (®/ p 20. Liniscus n. Typophoritae, inter Eulydrius et Mouhotina p 129, sansibaricus n. Zanzibar p 130; Lefevre (^j. Mecistes seriatus n. Natal ; Lefevre (^) p 122. Melmophora nom. n. für Melina Chap. (bei den Mollusken und Dipteren vergeben), nigripes n. Brasilien; Lefevre (^; p 157. Metachroma antennalis n. Portorico ; Weise C^) p 155. Noda acuminata n, Colombia, granosa n. Brasilien, p 16, insignis n. Colombia, ?-t{^- cornis XL., spinulosa n. Brasilien p 17, tibialis u. Bogota p 18; Lefevre (^) ; cfr. Nodonota. Nodina celebeyisis n. Celebes, Kaudari ; Jacoby (') p 22. Nodonota nom. n. für Noda Chap. (bei den Dipteren vergeben); Lefevre (^) p 166. Nodostoma japonicum n. Kisa, ruficolle n. Fig. Nikko, Fukushima p 205, modestum n. Yuyama, Hitoyoshi p 206 ; Jacoby (^) — vidgaris Chap. zu Phascus p 40 ; Lefevre [^) — 3Iartini n. Tonkin p 65 ; Lefevre (^) — cyrtopus n. p 5S, janthi- num n. p 59, philippinense n. p 60 Philippinen; Lefevre (^). Olelistes n. inter Odontionopa et Phascus, varians n. Old Calabar; Lefevre (^] p 66. Ocnida noro. n. für Ocnws Clark (bei den Echinodermen vergeben); Lefevre (^j p 111. Odontionopa chloris n. Cap ; Lefevre {^) p 65. Oomorphus [Lamprosoma] japanus n. Oyam-a, Ischiuchi ; JaCOby (^) p 197; cfr. hamprosotna. Pagellia n. inter Scelodonta et Seniiona, acuttcosta n., foveolata n., suturaUs n. Phi- lippinen; Lefevre (*) p 70. Phaedrias nom. u. für Phaedra Chap. (bei denLepidopteren, Mollusken und Crusta- ceen vergeben) ; Lefevre (^) p 166. '^ Phaedroides n. Nodostomini, philippinensis n. Luzon, Bohol, Ost-Mindanao ; Lefevre (6) p 125. Phascus maculatus Lef. = [Nodostoma^ vidgaris Chap. ; Lefevre ('?) p 40. Phytorus cyclopterus n., fervidus n., gibbosus n., nigripes n., plebejus n. Philippinen p 134, jjuncticollis n. ibid., simplex n. Malacca p 135 ; Lefevre (^). Podoxenus peruvianus n. Peru; Lefevre (*) p 42. Pseudocolaspis Ober thüri Faivm. zu Callipta; Lefevre (^) p 125. PJiabdopterus nom. n. für Phabdophorus Lef. (bei den Fischen vergeben) p 46, cäj- liensis n. Chili, cupreatus u. Colombia p 46, Ktrschin. Bogota, limbalis n. Cayeune, o&sjVms n. Venezuela, Caracas, versatus n. Venezuela, Valencia p 47 ; Lefevre (*). Rhambastus bicolor n. Süd-Guinea; Lefevre (*) p 139. Rhyparida fulvolimbata n. Sidney ; Lefevre (^) p 95. Scelodonta pulchra n. Macassar; Schaufuss p 207 — aeneola n., dispar n. Philip- pinen, eorrugata n. Old Calabar; Lefevre C") p 68. Semiona n. Scelodontini, prope Scelodonta et Syricta p 127, squammeoguttata n. West-Niams-Niams p 128; Fairmaire {^'). Stethotes tibialis n. Tonkin; Lefevre (*) p 65. Syagrus aeratus n. Gabon; Lefevre (^) p 138. Teaspes lugubris n. Brasilien; Lefevre (*) p 20. Tomyris elongatula n. Tasmanien, pusilla n. König Georgs-Straße; Lefevre (^) p 64. Trichotheca vagans n. Texas; LeCOnte (') p 26. Tricliona n. Typophoriui , pw^^Q Thyrasia: fasciata n. , nigromaculata n. Sumatra; Lefevre (^) p 147. Tymnes omoplata n. Mexico; Lefevre (^) p 115. Typophorus furvus n. Brasilien; Lefevre (*) p 131, 8. Hexapocla. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., FaunLstik und Systematik etc. 329 Sectio Chry somelini. Buddeberg p 101-105 beschreibt die Larve und Puppe von Timarcha tenehri- cosa L. und violaceonigra Deg. und macht Mittheilungen über die Lebensweise dieser Arten. Letzner (^^) beschreibt die Larve und Puppe von Phytodecta rufipes Deg. French beschreibt die Larve und Puppe von Chrysomela clivicolUs Kirby. Ouges (^) beschreibt und bildet ab die Entwicklungsstadien der auf Solanum rostratum lebenden Lej)tinotarsa xindecimlineata Stäl. Weise (^) bespricht die 0/ewalarven und deren Zucht. *Coleman bespricht die in der Erde erfolgende Verpuppung des Coloradokäfers. Claypole bespricht das Auftreten des Colorado- käfers in den Mittelstaaten. Riley (Rep. Entomol. f. 1884, Titel s. in Abschn. XIII) bildet von Plagiodera scripta F. die Entwicklungsstadien und den Fraß ab. Nach Bedel {'•*) p 57 wird die algerische Phytodecta Grandini Desbr. irrthümlich aus Frankreich angegeben. Fauvel (^) gibt eine Übersicht der gallorhenanischen Oreina nach Weise's Bestimmungstabelleu. Letzner (''*, ^^) bespricht Timarcha metallica Laich, aus Schlesien und erörtert die Varietäten von Phaedon cochleariae F. Sahlberg (^) verzeichnet von der Tschuktschen-Halbinsel Chrysomela 4, 2 n. und bespriclit ausführlich Chrysomela rufipes Men, Jacoby [^) verzeichnet aus Japan: Chrysomela 4, 3 n., Phytodecta 4, 1 n., Gastrolina 1 n. Besprochen wer- den Phytodecta rufipes Deg. , gracilicornis ? Kr. , niyroplagiata Baly. Moffat be- spricht Chrysomela labyrinthica Lee. = pnirsa Stäl , Aligell und Caulfield (-) die Varietäten der Chrysomela scalaris Lee. [philadelphica L.]; Ersterer bildet diesel- ben ab. Jacoby (^) bespricht Phyllocharis Jansoni Baly. Aesernoides n. prope Aesernia, nigrofasciatus u. Süd-Queensland; Jacoby [^j p 223. Australica suturalis n. Australia, Somerset, Cape York; Jacoby (^) p 25; cfr. Ca- lomela. Calomda [Australica) capitata n. Rockkampton, sexmaculata n. Port Moresby, New- Guinea p 224; JaCOby {^). Chalcolampra riifipes n. Queensland; Jacoby (-^j p 225. Chrysomela semiopaca Fairm. = confossa Ysärm. var. ; Bedel (■*) p 89 — [Pleuro- sticta't] cavigera ]) 35, magniceps n. p 38 Tschuktschen-Halbinsel ; Sahlberg (^) — cyrtonoides n. Konose p 206, nikkoensis n. Nikko, Yunoshiku, Urasa, gemi- nata Payk.'! Hakodate p 207, [Oreina] obscurofasciata n. Fig. Niigata p 208; Jacoby (^); cfr. Oreina. Gastrolina japana n. Fig. Japan; JaCOby [*) p 210. Lamprolina unicolor n. Australien; Jacoby (^J p 225. Leucocera laevicollis n. Fig. Portorico ; Welse ('^j p 156. Melasoma nigritarsis n. Delagoa-Bay, Africa ; JaCOby (^) p 226. Oreina luctuosa Ol. = tristis F. - caerulea Ol. ; FaUVOl (^) p 271 — dolens n. Sa- niarkand; Kraatz (^^) p 298; cfr. Chrysomela. Phyllocharis Jansoni Bsi\j var. Australien, Cape York, Somerset p 23, i^npressicollis n. ibid. p24; Jacoby (^) — cyanicornis var. conßuens n. Torres -Straße ; Ja- coby (3) p 225. Phytodecta Linnaeana Sehr. var. nigrolucana Preußen; CzwalJna i^) p 256 — ro- hustan. Miyanoshita, Hiogo ; Jacoby (^) p 209 — scictellaris n. Nord-America, Küste am Berings-Sund ; Sahlberg ("^j p 55. Plagiodera Chapuisi n. Neu-Guinea, Fly River, Isl. ofYule, riparia r\. Fly River; Jacoby (^j p 31 — bistrijmnctata n. Panama, Chiriqui, philippinensis n. Philippi- nen; Duvivler (*) p 118. Stethomela basalis n. Neu-Guinea , MountEpap25, palliata n. Aru-Isl. , Wokan ^ 2Q, fulvicollis n. Cape York, Somerset, papuana n. Neu-Guinea, Fly River, 330 Arthropoda. Katau p 27, varians n. Neu-Guinea, Isl. of Yiile p 2S , Chapuid n. Neu-Guinea, Fly River, Ramoi p 29, smikiolacea n. Fly River p 30 ; Jacoby ('). Xenomela Heydetnn. Turkestan p A^%,fuscipes n, Samarkand ; Weise (^) p 407. Sectio Galerucini. Buddeberg p 105—108 beschreibt die Larve und Puppe von Longitarsus exoletus L. und melanocephalus Gy 11. , und macht Mittheilungen über deren Lebensweise. Wood C) bespricht Batophila aerata als Schädling der »raspberry«. Riley (Rep. Entomol. , Titel s. u. Abschn. XIII) bildet von Phyllotreta vittata F., Zimmennanni Cr. und al- hionica Cr. die Entwicklungsstadien ab. Van Wagenen bespricht das massenhafte Auftreten von Galeruca xanthomelaena bei New- York. ThomSOfl (-^j gibt Agelastica halensis L. als neu für Skandinavien an. Weise (^M ^\hi Longitarsus nigerriniusGyM. und papaveris All. als neu für Deutschland an. Heyden (") verzeichnet Gmptodera lythri Anh., Crepidodera chloris Foudr. und Phyllotreta vittata Redtb. von Chaba- rofka als neu für das Amurgebiet. Duvivier ('^) hat die von Weyers bei Fort de Kock, Painan (Sumatra) und auf der Insel Bodjo gesammelten Halticinen und Galerucinen bearbeitet : Acrocrypta 1, Nisotra 1, Haltica 1, Sutrea 1 n., Eucy- cla 1, Sphaeroderma 1 , Aulacophora 4, Glyptolus 1, Arcastes 1, Haplo&onyx 3, 1 n., Caritheca 1, Antipha 1 n., Taphina n., 1 n., Emathea 1, Monolepta 3, Theopea 2 n. Verf. erörtert die Geschlechtsunterschiede Yon Glyptolus viridis hac. Schau* fUSS bespricht Aulacophora melanoptera Boisd. , Jacoby (^) Nisodra gemtlla'f Er., Sphaerometopa acroleuca Wied., Sehaethe lusca F., Sphaeroderma apicipennis Baly, Phyllotreta malayana Baly. Psylliodes cognata'f Baly. JaCOby('^) setzt die Bearbei- tung der Halticinen von Central -America fort: Systena 3 n., Clamophora 2 n., Sangaria 1, Pseudoepitrix n., 2 n., Crepidodera 5 n., Mesodera n., 1 n., Epitrix 23, 15 n., Trichaltica 2, In., Crimissa \, Dibolia 2, In., Lupraea n., 2 n., Pto- cadica 1, Aphthona 19, 16 n., Phyllotreta 8, 7 n., Longitarsus 11, 5 n., Palaeo- thonan., 8 n., Chrysogramma n., 1 n., Acrocyum n., 4 n., Notozona 10, 2 n., Blepharida lln., Oxygona 2, In., Pseudogonan., 2n., Euplectroscelis 3 n., Psyl- liodes 2 n., Chaetocnema 11, 5n., Asphaera 15, 6 n., Homophoeta 7, In. Außer n. sp, werden abgebildet: Satigaria HaagiHar. , Epitrix parvida F., Trichaltica hogotana Har. , Crimissa cruralis Stäl, Dibolia borealis Chevr. , Aphthona diversa Baly, Notozona histrionica, Asphaera cyanopsis Har. , pallida Jac, Homophoeta variabilis Jac, recticollis Bsily , aj/inis Jslc, albofasciata Ja.c., cinctipennis Chevr. Weise (^^) verzeichnet aus Portorico : Diabrotica 4, Cerotoma 1, Galerucella In., Oedionychis 3, Omototus 1, Disonycha 3, In., Lactica 1, Haltica 3, Hermoeophaga In., Phyl- lotreta 1, Longitarsus 1, Aphthona 1, Megistops In., Homophyla 1 n,, Systena 2, In., Crepidodera 1, Ejntrix 2, Plectroscelis 1, Diabrotica quadriguttata Ol., innuba F., Cerotoma rußcornis Ol., Omototus ferrugineus Suffr. , Longitarsus varicornis Suffr., Aphthona compressa^ixSv., Crepidodera asphaltina ^w^x . imä Epitrix fuscata Duv. werden besprochen. Waterhoiise (^) T 153 bildet ab : Adoxia vulgaris Br. Acrocrypta fidvicollis Jac. var. Insel Bodjo; Duvivier (^j p 48. Acrocyum n. verwandt mit Ch-ysogramma und Blepharida ; Sallaei n. Fig. Mexico p 381, mßcicnm« n. Fig. Guatemala, palpalis n. Panama p 366, chiriquensis n. Fig., rohusta n. Panama, aternma n. Fig. Guatemala p 367 , brevicoi-nis m. Panama p 368; Jacoby ['). Aphthonoides n. prope Aphthona, Beccarii n. Java, Tcibodas ; Jacobv (^) p 59. Arcastes sumatrensis Jac. var. Fort de Kock; Duvivier (^) p 50. Argopistes hisularis n. Neu-Guinea, Ternate, Isl. of Yule ; Jacoby (*) p 56. Arsipoda parvula n. Australien, Somerset; Jacoby (^) p 34. Asphaera transversofasciata n. Fig. Panama p 399, inclusa Baly = lunata F. p 400^ semifulva n. Fig. Costa Rica, margbiicollis n. Panama p 402, chonialensis n. Nicaragua, jyo^//rt n. Mexico, Guatemala p 403, nigrofasciatan. Guatemala, Costa Rica p 404 ; JaCOby (^) ; cfr. Oedionychis, Homophoeta. Atimeta Chap. = Simaethea Baly; JaCOby (^) p 47. Aulacophora nigripeta n. Ceylon p 389, mulamanica n. Andamauen; Duvivier '[}) p 390 — scutellata Boisd. var. posticalis n. Macassar ; SchaufuSS p 208. BUpharida suturalis n. Fig. Guatemala p 385 , reticulata n. Fig. p 385 , mexicana n. Fig., trifasciata n. . Fig. p 386, marmorata n. Fig., punctatissinia vl. Fig., Godmani n. Fig. p 387, macidicollis n. Fig., qitatuordecimjmnctata n. Fig. p 388, umcolor n. Fig., Flohri n. Fig. p 389 Mexico; Jacoby {^j. Bonesia variabilis n. Nyassa ; Duvivier (^) p 242. Caeporis nanula n. Süd-Carolina, Texas; Leconte (^) p 29. Caritheca sumatrensis Jac. var. Ile Bodjo ; Duvivier p) p 51. Cerophysa splendens n. Ceylon p 392, biplagiatan. Hongkong p 393 ; Duvivier('). Cerotoma rußcomis Ol. var. blandula n. Fig. Portorico ; Weise (^^) p 157. Chaetocnema Alberiisin. Australia, Somerset; Jacoby (^) p 37 — discoidalis n. [me- xicana Har. non Baly) Mexico p395, transversicollis n. Fig. Panama, capitata n. Fig. Guatemala, Mexico, cephalotxis "n. Guatemala p 396, /Mfotcorms n. Me- xico, Guatemala, frontalis n. Guatemala p 397 ; JaCOby (^). Chaloenus dimidiata n. Borneo, Sarawak ; Jacoby (^) p 36. Chrysogrammus n. Halticinae , ähnlich Disonycha , Färbung wie bei Calligraphay octomaculata n. Fig. Guatemala; Jacoby (^j p 380, Chthoneis suturalis n. Brasilien; Duvivier (^j p 243. Clarnophora 7iigritarsis n. Fig. Panama, Salvini n. Guatemala; Jacoby (^) p 339. Crepidodera seminigra n. Australia, Somerset p 65, unicolor n. Sumatra, Sungei Buhl p 66 , Gestroi n. Neu-Guinea, Fly River, dubiosa n. Neu-Guinea, Sorong, Hatamp67; JaCOby (^) — chiriquensis n. Fig. Panama p 342, setnihirsuta n. , guate^nalensis n , pallipes n. Guatemala p 344, (?) obliterata u. Guatemala, Pa- nama p 344; Jacoby (■-). Cynorta cavifrons n. Philippinen; Dlivivier (^) p 247, Dibolia Championiu. Guatemala; JaCOby (^j p 358. Disonycha jmlchra Casey = punctigera Lee, procera Casey = pennsylvanica 111,;^ Horn (^ö) p HO — pallipes xs.. Portorico; Weise ('2) p 159. Doryida Balyi n. Malacca ; Duvivier {') p 394. Enneamera celehensis n. Celebes, Kandari, laevipennis n. Aru-Isl., Wokan; Jacoby^ Epitrix violacea n. Fig., puncttcolhs n. Guatemala p 346 , thoracica n. Fig. ibid. p 347, clypeata n, Brit. Honduras, Guatemala p 348, montana n. Mexico, Gua- temala p 349, minuta n. Guatemala p 350 , convexa n. ibid., intermedian. Fig, Mexico, Guatemala p 351, dilaticomis n. Fig. Guatemala, Panama, fulvifrons n. Guatemala p 352, subcostata u. Fig, Panama, pulchella n. Mexico, Panama. 332 Arthropoda. p 353, Haroldi n., castanea n. Guatemala p 354, suhglabrata n. Panama p 355; Jacoby {^). Eryshisu. Haiti cinae prope -4/'«ipor?a, celebensis n. Celebes , Macassar; Jacoby (^) p 40. Eucyclaßavomaculata n. Neu-Guinea, Kataup57, malayana ti. Neu-Guinea , Fly River p 58 ; JaCOby (i). Eudolia n. Halticinae, vom Habitus einer Crioceris, sumatrana n. Sumatra, Mt. Sin- galang; Jacoby (^j p 69. Eiqilectroscelis variabilis n. Fig. Mexico, Brit. Honduras , Guatemala, Nicaragua, Panama p 392, chontalensis u . Nicaragua, brevicomis n. Y'i^. Guatemala p 393 ; Jacoby p). Galeruca erosa n. Utah; LeCOnte (^; p 28. Galeriicella varicornis n. Portorico ; WeiSG (^2) p 157. Haltica Bürgest Crotch zu Caeporis\ LeCOnte (^) p 29 — dimidiata Thunbg. var. Fönte boa, ob. Amazonas: Dohrn [^) p 147. Haplosonyx nigricollis n. Nias, Malacca ; Duvivier (') p 244 — collaris n. Ile Bodjo; Duvivier [^) p 50. Hermoeophaga cylindrica n. Portorico ; WeiSG {^'^) p 160. Homophoeta clerica Er. zu Asphaera p 401, militaris Jac. = recticollis Baly, Cham- pioni n. Fig. Costa Rica, Panama p 406 ; Jacoby (2) ; cfr. OedionycMs. Homophyla adusta Har. = ? Euplectroscelis [Lactica] dimidiata Thunbg. ; JaCOby (•') p 392 — Kangin. Fig. Portorico; Weise (^'■^) p 163. Hovalia n. prope Ornithognathus, comiiata n. Madagascar ; Fairmaire (^) p 240. Hylaspes Dohrnin. Birma p 246, (?) ornatipennis n. China p 397 ; Duvivier (^). Hypolampsis guttatus n. Louisiana; Leconte (') p 29. Lactica dimidiata Thunbg. ? zu Euplectroscelis \ JacOby (^j p 392 — bicolor n. Bra- silien, Espirito Santo p 387, australis n. Queensland p 388 ; Duvivier ('). Leptosonyx n. prope Galeruca, hirtus n. Mongolei, Ili ; Weise ('') p 315. Liprus malayanus \\. Sumatra, Mt. Siugalang ; JaCOby (^) p 71. Litlwnoma cyanea Tourn. = Favieri Fairm. ; Bedel (^) p 90. Longitarsiis nigricollis n. Sumatra, Mt. Singalang; JaCOby (^) p 65 — chontalensis n. Nicaragua, angtisticollis n. Panama p 373, chiriquensis n., intet-medius n. ibid. p 374, nigricornis n. Nicaragua p 375, apicicornis n. Guatemala p 376; Jacoby (^). Luperolophus n. prope Alopena, temiecostatus n. Madagascar ; Fairmaire [^j p 241. Licperus maculicollis n. San Diego, Californien p 27, varicornis n. Kansas, Texas, Arizona, torquatus n. San Mateo, Mariposa, Californien; Leconte (^) p 28. Lupraea n. Aphthoninae, Habitus von Luperus^ longicomis n. Guatemala, fulvicollis n. Fig. Guatemala, Nicaragua; Jacoby (^j p 359. Malacosoma zanzibarica n. Zanzibar; Duvivier (^) p 391. 31anobia n. Halticinae, verwandt mit Neopraea, Diphaulaca und Lactica, 7iigripennis n. Sumatra, Mt. Singalang, p 73, pallipes n. Mt. Singalang, Java, Tcibodas, ba- salis n., fulvicollis n. Mt. Singalang p 75; Jacoby (^). Megistropsßctor n. Fig. Portorico; Weise (^^j p 162. Mesodera n. prope Crepidodera p 344, fulvicollis n. Fig. Guatemala p 345 ; Ja- coby(2). Isleopraea n. Halticinae, prope Aphthona submetcdlica n. Sumatra, Mt. Singalang ; Jacoby (i) p 28. Nisotra obliteraia n. Neu-Guinea, Hatam, Andai, Katau, Ramoi p 35, chrysomehidvs Tl. Borneo, Sarawak p 36 ; JaCOby (') — signatipennis n. Madagascar p 241, bico- lor n. Australien, Swan River p 385; Duvivier ('). Notozona histrionica Baly = elegans Clark, semifasciata n. Fig. Guatemala p 383, ni- carague7isis n. Nicaragua p 384 ; JaCOby (-). 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 333 Oedionychis sumatmna n. Sumatra, Mt. Singalang ; Jacoby (') p 76 — longicoUis Schauf. = Asphaera lineata F., perforata Schauf. = Asjihaera abdoininalis Chevr., ornata Baly = A. abbreviata F. p 400, laticoUis Jacoby = Asph. clerica'Ev. p 401, discicolUs Scliauf. = nobilitata F., reciicoUis Baly zu Hoviophneta abdominalis Chevr. und albida Schauf. zu Asphaera p 404, ociomaciilata Crotch = Homophoeta aequi- noctialis F. p 406; JaCOby (2). Ophrida striatijicnnis n. p 32, nigromaculata n. p 33 Neu-Guinea, Fly River; Jacoby [^). Oxygona bifasciata n. Panama; JaCOby (2) p 390. Palaeoihona n. verwandt mit Aphihona und PJiyllotreta rugifrons n. Fig. Mexico, gua- temalcnsis u. Guatemala p 377, longicomis n. Fig., tmicostata m. Guatemala, semi- fvlva n. Panama p 378, subnigosa n. ibid., violacea n. Guatemala, frontalis n. Mexico p 380; Jacoby (2). Parastetha ? apicipennis n. Bangkok; Duvivier (^) p 395. Phyllechthrus texanus n. Texas; LeCOnte (^) p 28. Phgllobrotica livida n. Arizona; Leconte (^) p 28. Phyllotreta fulvicolUs n. Australia, Somerset p 60, nigricomis n. Neu-Guinea, Fly River p 61, snturalis n. Isl. of Yule p 62; JaCOby (') — guatemalensis n. Fig., transversicollis n. G^uai^maXa p 369 , abdominalis u. Fig., nigricollis tx. Fig. Pa- nama p 370, submerallica n. Fig. Guatemala, mexicana n. Fig. Mexico p 371, CrofcJii n. Fig. Mexico p 372; Jacoby (^j — serricortiis n. Manilla; Duvivier (') p 387. Platyxantha sutiiralis n. Manilla; Duvivier (^) p 398. Podagrica cyanipennis u. St. Thomas; Weise (^^) p 165. Praeochralea n. 23. Gruppe Chapuis prope Ochralea, antennalis n. Malayische Inseln; Duvivier (i) p 245. Pseudadorium n. prope Rhopalotoma, Habitus von Adorium, vemicatum n. Madagascar; Fairmaire (^) p 239. Pseudoepitrix n. prope Saiigaria, Habitus von Donucia oder Ltma, hirtipennis n. Fig. Panama p 341, vittatipennis n. Fig. ibid. p 342 ; Jacoby P) . Pseudogona n. verwandt mit Oxygona und Systena p 390, panamensis n,, chiriquensis n. Fig. Panama p 391 ; Jacoby ^]. Psylliodes extricata Casey = punctidata'M.Ql'&h.^ angusfata Casej = interstitialis Lec. var. convexior Lec. ; Hom [^^) p 110 — guatemalensis n., tristis n. Guatemala; JaCOby (2) p 394. Sebaethe variabilis n. Sumatra, Mt. Singalang p 48, celebensis n. Celebes, Kandari p 49, violaceipennis n. Neu-Guinea, Ramoi, Ternate, pallida n. Celebes, Kandari p 50; Jacoby (i). Simaethea biplagiata n. Sumatra, Mt. Singalang; JaCOby (') p 46. Sphaeroderma laevipennis Js,c. var. Painan, Sumatra; Duvivier [^) p 49 — abdominalis n. Sumatra, Mt. Singalang, malayana n., ßavicollis n. ibid. p 52, cyanipennis n. ibid., celebensis n. Celebes, Kandari p 53, apicipennis n. Java, Tcibodas p 54, Bec- carii n. Sumatra, Mt. Singalang, Sungei Bulu, Java, Tcibodas, /wwe^^vs n. Suma- tra, Mt. Singalang p 55 ; Jacoby [^) . Sphaerometopa nigricollis n. Malacca ; Duvivier (^) p 386 — quadripunctata n. Bor- neo, Sarawak, fulvicolUs n. Sumatra, Mt. Singalang p 41, discoidalis n. Java, Tcibodas p 42; Jacoby (^). Sutrea sumatretisis n . Painan, Sumatra"; Duvivier (^j p 49 — Balyi n. Neu-Guinea, Fly River p 43, dimidiatipejinis n. ibid., collarisn. Neu-Guinea, Hatam p 44, viola- ceipennis n. Neu-Guinea, Ternate, Sorong p 45 ; Jacoby ('). Systena marmorata n., qiiadraticollis n. Panama p 337, megasceloides n. Guatemala p 338 ; Jacoby i^) — varia n. Fig. Portorico; Weise [^^] p 164. 334 Arthropoda. Taphma n. zwischen Antipha und Emathea, dimidiata n. Ile Bodjo p 52; Duvi- vier (2). Theopea Fairmairei n. Java; Duvivier '\}) p 24S — Weyersi n. p 53, bodjoensis n. Ile Bodjo p 54; Duvivier P). Thraschyroma n. Halticinae, prope Crepidodera p 70, siibmetaUica n. Sumatra, Mt. Singalang p 71; Jacoby (•)• Trichaltica variabilis n. Fig. Brit. Honduras, Guatemala, Panama; JaCOby [^] p 356. Subfamilie Cryptostomata. Sectio Hispinae. Baly gibt Notizen über die Lebensweise centralamericanischer Arten. Gorham (6) verzeichnet von Japan 4 Hispaarten. Gestro (^j bat die von D'Albertis, Doria und Beccari im malayischen Archipel gesammelten Hispinen bearbeitet, 3S sp. : Callispa 1, Hispodonta 2, In., Spilispa 1, Oxycephala 6, 5 n., Botryonopa 2, Ani- sodera 3, 1 n., Gonophora 11, 5 n., Oncocephala 2, 1 n., Monochirus 1, Hispa 9, 3 n. Baly hat die Bearbeitung der Hispinen von Central- America begonnen. Von den bisher behandelten Gattungen besitzt Central- America : Euxema n., 1 n., Ste- nispa 3, In., Amplipalpa 1, Alurnns 3, 1 n., XantJiispa 1 n., Homalispa 3 n., Cephaloleia 42, 34 n., Demotispa 3, 2 n., Prosopodonta 2, 1 n., Cheirispa 2 n., Aresens 2, CephalodoyUa 22, ISn., Charistena 7, 2 n., Parac/ialepus n., In., CAa- /ejoMS 64, bisher behandelt 42, 38 n. Zahlreiche Arten werden besprochen oder neu diagnosticirt. Von schon beschriebenen Arten werden abgebildet: Stenispa Sallaei Baly, Amplipalpa Giiermi Baly, Alurnns ornatus Baly, cassidens Westw., Cephaloleia gratiosa Baly, Erichsoni Baly, Sallaei Baly, pretiosa Baly, vicina Baly, ruficollis Baly, Prosopodonta limbata Baly, Arescus bicolor Gray, perplexns Baly, C ephalodonta quinguetnaculata Guqy . , Javeä ^aly, C/iai'isfena perspicua Hoi'ü, Cha- lepus morio F., bellulus Chap. Weise (^^j verzeichnet von Portorico: Odontota 1, Octhispa 1 n. WaterhOUSe (^) T 153 bildet Gonophora Wallacei'QdXy ab. Alurnus Salvini n. Fig. Costa Rica, Panama; Baly p 5. Anisodera elongata n. Sumatra, Mt. Singalang; Gestro H p 163. Arescus Waferhousei n. Caracas, Amazonas; Duvivier {^) p 249. Cephalodonta gemmans n. [generosa Fig.) Guatemala p 32, callosa n. Fig. Panama, Godmani n. Fig. Nicaragua, Panama p 34, maculata n. Fig. Guatemala p 35, Championi n. Fig. Panama p 36, pallida n. Nicaragua, gracilenta n. Fig. Panama p 37, elongata n. ibid. p 38, erudita n. Fig., proxima n. Fig. Panama, /aieft' Baly var. Guatemala p 40, obscurovittata n. Nicaragua, posticata n. Panama p 41, sub- parallela n., abbreviata n. ibid. p 43, iSe/zez-iien Baly var. Nicaragua, ejusd. var. Panama, an^iUata n. Nicaragua p 43, fraterna \s.., ferox n. Fig. ibid. p 44 ; Baly. Cephaloleia gratiosa Baly var. Fig. Mexico p 8, Championi n. Fig. Panama, ornata n. Fig. Nicaragua p 9, nigropicta n. Fig., distinctan. Fig. Panama p 10, antennata n., placida n. ibid. p \\ , punciicollis n. Nicaragua, Panama, congener n. Panama p 12, perp)lexa n. Guatemala, lata n. Panama p 13, suturalis n. Fig. Guatemala, Nicaragua p 14, discoidalis n. Mexico, dorsalisn., historionica n. Fig. Panama p 15, trivittata n. Guatemala, Panama p 16, elegantula n. Fig. Panama, lateralis n. Gua- temala p 17, instabilis n. Fig. Guatemala, Panama p 18, intermedia n., stenostoma n. Fig. ibid. p 19, leucoxantha n., bella n. ibid. p 20, quadrilineata n. ibid. p 21, separata n. Mexico, Belli n. Nicaragua p 22, suaveola n., consanguinea n. Fig. Guatemala p 23, fulvolimhata n. Fig. Mexico, Guatemala p 24, mctallescens n. Guatemala, leptimorpha n. Panama p 25, tenella u. Guatemala, Stevensi -q.. Fig., S. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 335 sulciceps n. Panama p 26; Baly — altemans Waterh. var. Fönte boa am oberen Amazonas; Dohrn (^j p 145. Chalejms Championin. Panama p 50, semilimbatus n. Mexico, suturalis n. Guatemala p 51, congtner u. Fig. Panama, placichis n. Fig. Guatemala p 52, opacicollis n. Pa- nama, Satmdersi n. Guatemala, Panama p 53, amicus n. Fig. Panama, terminatus n. Guatemala, Panama p 54, tibialis n. Panama, Jansoni n. Nicaragua p 55, pal- lescens n. Panama, distinctus n. Fig. Guatemala p 56, h-evicejjs n. Panama p 57, roseus Web. var. Mexico p 58, Fryi u. Mexico, Guatemala, diver sipes n. Mexico p 59, instahilis n. Mexico, Guatemala, marmoratus n. Fig. '.Mexico, Guatemala, Nicaragua, Panama p 60, subapicalis n. Mexico p 61, vittaticollis n, ibid. Mexico, viridanus n. Fig. Panama p 62, productns n. Guatemala p 63, contiguus n. Fig. Panama, /rato-«?/s n. Fig. Mexico p 64, Pascoei n. Guatemala, amabilis n. Mexico p 65, digressns n. Mexico, nigripictus n. Fig. Panama p 66, vicinalis n , consangni- neus n. Fig. Panama p 67^ haematoderus n. Fig. Panama p 69, rnßthorax n. Mexi- co, sanguinosiis n. Nicaragua, chromaticus n. Fig. Panama, ejusd. var. Guatemala, Costa Rica p 70, propinquus n. Mexico, Guatemala, clypeatus n. Nicaragua p 71, Horni w., subparalleliis n. Mexico p 72 ; Baly. Charistena bicolor n. Neu-Mexico ; Smith (•^] p 95 — Championi u. Guatemala, _/«- nesta n. Mexico, Guatemala; Baly p 46. Cheirispa dorsaia n. Fig. Nicaragua, Panama p 29, distiticta n. Fig. Panama p 30 ; Baly. Demotispa limbata n. [limbatella Fig.) Guatemala; Baly p 27 — cfr. Himatiditim. Euxema n. Ligula an die Spitze des Mentums gerückt, durcli eine undeutliche Naht- linie von demselben getrennt, ijjsignis n. Fig. Panama; Baly p 3. Gonophora unifasciata n. Celebes, Kandari p 165, basalis n. Sumatra p 168, atra n, Borneo, Sarawak p 169, sinuatan. Java, Tcibodas p 170, minuian. Sumatra, Ajer Mantcior p 171; Gestro (2). Himatidimn limbütelhmi Boh. zu Demotispa \ Baly p 28. Hispa postica n. Celebes, Kandari p 175, dimidiaia n. ibid., cincta n. Neu-Guinea, Andai p 177 ; Gestro (^j . Hispodonta Chapuisi n. Neu-Guinea, Andai; Gestro (-) p 156. Hispopria coeruleipennis n. Philippinen ; Duvivjer (^) p 399. Homalispa variabilis n. Fig. Panama, limbifera n. Guatemala p 7, gracilis n. Panama p 8 ; Baly. Microrhopala imiformis n. Arizona; Smith (^) p 94. Octhispa loricata n. Fig. Portorico ; WelSG (^2) p 166. Odontota Chap. = Chalepus Thunbg. ; Baly p 48 — Homi n. Massachusetts p 94, lateritia n. Arizona p 95 ; Smith {^). Oediopalpa Baly = Amplipalpa Har. ; Baly p 5. Oncocephala angulata u. Sumatra, Ajer Mantcior, Sungei Bulu; GestrO [^) p 172. Oxycephala Bruymii n. Halmahera, Molukken p 158, metcdlica n. Fly River p 159, latirostris n. ibid. p 160, Albertisi p 161 ibid., longispinan. Fig. Waken Isl. prope Aru-Isl. p 162; Gestro (2). Farachalepiis n. von Chalepus durch lOgliedrige Fühler verschieden p 47, brevicorms n. Fig. Mexico p 48 ; Baly. Parallelispa n. prope Stenispa, quadraticollis n. Madagascar ; Fairmaire (^) p 239. Frosopodonta costata u. Fig. Panama; Baly p 28. Stenispa brevicornis u. Mexico; Baly p 4. Xanthispa coeruleipefmis n. Fig. Nicaragua; Baly p 6. 336 Arthropoda. Sectio Cassidini. Donckier beschreibt und bildet ab die Verwandlungsstadien von Omoplata axillaris Sahlb., Mesomphalia lineatocollis und eine wahrscheinlich zur Gattung Omoplata gehörige Larve von Rio de Janeiro. Olliff (^) beschreibt die Larve von Porphyraspis tristis und bespricht die Lebensweise dieser Art. Harrach (^j ver- zeichnet die Nährpflanzen der deutschen Cassida, 29 sp. Engel berichtet über die Verwüstung eines Runkelrttbenfeldes bei Frankfurt an der Oder durch Cassida nehulosa. Gorham (■^) bespricht Cassida c/iloris äu&r . Heyden (^) verzeichnet Cas- sida vittata Vill. von Pochrofka als neu für das Amurgebiet. Gorham [^) verzeich- net von Japan: Aspidomorpiha 2, in., Cassida 7, 1 n., Coptocycla 8, 3 n. und be- spricht Cassida rugosopunctata Motsch., vespertina Boh., rugifera Kr., Coptocycla crucife7-a Isx . j Thais ^oh., vesicidaris 'Qoh.. Weise C^) verzeichnet von Portorico : Chelijmorpha 2, Mesomphalia 1, Coptocycla 2. Oohm {^] p 62 bespricht Elytro- ffona iftterjecta Boh. WatorhOUSB (^) T 157 bildet ab: Mesomphalia latissima Baly und Ites plagiatus Waterh. Aspidomorpha clliptica n. Niigata ; Gorham {^) p 380. Cassida bis/crensis n. Biskra p 99, ram,ifera n. Bona, deßexicollis Boh. zu Oxylopus P 100; Desbrochers — bish-ensis Desbr. = Köchlini M.a.x'A. ; Fairmaire ("j p 53 — xindecimnotata Gebl. var. Namagan ; Heyden {^**) p 283 — erudita Baly = rn- gosopunctata Motsch., nigrogiittata n. Central-Japan p 281, consociata Baly = fus- coritfa Motsch. p 282; Gorham (6). Coptocycla sparsa n. Nikko, Sannohe, Sapporo, sigilata n. Kiga, Oyama p 284, spi- lota n. Nowata p 285 ; Gorham (^) . Oxylepus n. prope Cassida, capucinus n. Algier p 100, Palaestinaew.. Palästina p 101 ; Desbrochers — Oxylepus — Chelysida Fairm., capucimis Desbr. = Chelysida invo- luta Fairm. [suedae Halid. ?) = ? Cassida deßexicollis Boh. ; Fairmaire (') p 53. Familie Languriidae. Fowler (") erörtert die Charactere der hierher gehörigen Gen. Callilanguria eximian. Philippinen; Fowler (^) p 383. Languria Nyassae n. Nyassa-See p 384, calabarensis n. Old Calabar, dubia n. Guinea, Camaroon Mount. p 385, Mnrrayin. Old Calabar, /emora^w n. Guinea, Camaroon Mount. p 387, monticola n. ibid. p 387 ; Fowler (••) — divisa n. Colorado, Neu- Mexico ; Horn (^) p 139. Langurites lineatus Curt. Arizona; Horn C) p 139. Stenolanguria n. mit Oxylanguria und Langurites verwandt p 387, tricolor n. Old Ca- labar, Gorhami u. Camaroon Mount. p 388; Fowler (•^). Familie Erotylidae. Ritsema (*) bespricht eine von Perty beschriebene Episcapha]a.vve. Gorham (^) spricht sich gegen die Einführung des Namens Cyrtotriplax Crotch für Tritoma F. non Geoffr. aus. Heyden [^) verzeichnet Triplax elongata Lac. von Chabarofka als neu für das Amurgebiet. Eidoreus n. verwandt mit Hypodacne nnä Euxestus , minvtiis n. Oahu ; Sharp (^') p 146. Ettxestus minor n. Oahu ; Sharp (") p 145 Fig. 8. Hexapoda. VIII. Coleoptera. C. Biologie etc., Faunistik und Systematik etc. 337 Triplax Emgein. Attica ; Reitter {^^) p 391. Tritoma bifascies Walk. = Chilocorus opjjonens Walk. = Camptodes ornatus Motsch. (Coccinellidae) ; Olliff P) p 71. Tritomidea xantliosticta n. Borneo, Sarawak ; Gorham (') p 517 — atripennis n. Su- matra; Gorham (^) p 257. Familie Endomycliidae. Gorham [}] bespricht ^'ncymon tm»2ac?^/aif?/s Montr., rnßcollis Kirscli und angu- latus Gorh. Alexia glabra n. Bosnien, Varna, Mehadia; Reitter (*) p 204. Amphisternus gihhosus n. Sumatra, Sungei Bulu; Gorham (^) p 517. Beccaria n. prope Dryadites Friv. p 521, papuensis n. Neu-Guinea, Ramoi, Sorong p 522; Gorham (i). Dioedes costipennis n. Madagascar ; Fairmaire (^) p 242. Encymon Gerstaeckeri Dohrn = immaculatus Montr. p ^\.%, ferialis Gorh. = angulatus Gorh. var. p 520 ; Gorham (i). Engonhis Brookei u. Borneo, Sarawak; Gorham (^j p 521. Lithophilus cfr. Coccidttla (Coccinellidae) p 338. Meilichius expetitus n. Sumatra, Ajer Mantcior; Gorham (^) p 524. Monocoryna n. prope Lithophilus ?, aberrante Gattung p 527, decempunctata n. Suma- tra, Mt. Singalang p 529; Gorham ('). Mycetina Doriae n. Borneo, Sarawak, trimaculata n- Java, Teibodas; Gorham {}] p 524. Phalantha exsanguis Gerst. var. Fonte boa, oberer Amazonas ; Dohrn (^) p 146. Stenotarsus plagiatus n. Sumatra, Ajer Mantcior p 525, brevis n. ibid. p 526, Alber- tisi n. Neu-Guinea p 527 ; Gorham {^). Trycherus Raffrayi n. Ost-Africa, Zanzibar ; Gorham (^) p 520. Familie Coccinellidae. Buddeberg p lOS-llO beschreibt die Verwandlungsstadien vonRhizobius litura F. und macht Mittheilungen über die Lebensweise dieser Art. RiihI (^) beschreibt die Larve von Scymnus und schildert ihre Lebensweise. Riley (') bespricht die Lebensweise von Megilla maculata. Gineste berichtet über ein Massenauftreten von Coceinella septemptmctata . Die Thiere fanden sich im September in enormer Anzahl (nach beiläufiger Schätzung 350,000 Exemplare) in und auf einem iso- lirten Steinhaufen auf einem felsigen Hügel. Rabaild berichtet über ein ähnliches Auftreten von Adonia variabilis. Weise (^^) hat eine neue Revision der europäischen, mediterranen und sibiri- schen Coccinelliden mit Bestimmungstabellen der gen. und sp. geliefert. Verf. hat die zahllosen Abänderungen in der Zeichnung sehr eingehend studirt und fast sämmtlich als Varietäten oder Subvarietäten benannt. Ref. glaubt die Subvarie- täten (beispielsweise bei Hippodamia septemmacidata Deg. 19 n.) übergehen zu dürfen und beschränkt sich auf die Aufführung der Varietäten. Beschrieben sind : Coccinellidae phytophagae : Epilachna 4, Stibcoccinella 1, Cynegetis 1 ; Coccinelli- dae aphidiphagae : Hippodamiini : Hippodamia 2, Adonia 3, Anisosticta 2, Semia- dalia 5; Coccinellini : Adalia 7, Coceinella 18, Bulaea 1, Chelonitis \, Micraspis 1 , Anatis 1 , Mysia 1 , Halyzia 9 ; Synonychini : Chilomenes 1 , Ithone 1 ; Chilo- corini : Chilocorus 2, Exochomus 6, Briimus 1, Platynaspis 1; Hyperaspini: Hy- peraspis 1, 2 n. ; Rhizobiini: Coccidula 2, Rhizobius 2; Scymnini : Novius, subg. Zool. Jalireslericht. 1885. II. 22 338 Arthropoda. Novius s. str. 1, subg. Macronovius n. 2, Pharus o, Scymmis 38 und zwar subg. Pullus 13, subg. Clitustethus n. 2, subg. Stethorus n. 2, subg. ^StV/w 2, In., subg. Scymnus s. str. 9, subg. Nephus 8, subg. Biomus 2. *Kraus übersetzt die Be- stimmungstabellen der mitteleuropäischen Coccinellen von ßedtenbacher und Gut- fleisch. Weise (^) p 424 gibt den stideuropäischen Scymnus impexns aus der säch- sischen Schweiz an. Weise (') hQ&^xiohi Epilachna Manderstjemae'Kuls,., margini- collis Hope, mystica Muls. var. von Birma, Cryptolaemus Montrouzieri Muls. von Brisbane, Scymnus apicißavus Motsch. von China, irwmzeseens Motsch. von Ceylon, Birma und Japan. Weise (^^) verzeichnet von Portorico : Megüla 1, Psylhbora 2, Neda 2, Hyperaspis 2, 1 n., Scymnus 3. Biackburn & Sharp (^^) verzeichnen von den Hawaii-Inseln: Neda \, Coccinella sp. ? 1, Scymnus 3 n. Die ScyynjiussiXiQXi sind endogen. Adalia bothnica Payk. var. crucifera n. p 19, lipunctata L. var. sublunata n. p 21, frigida Schneid, var. parvula n., Revelierei Muls. var. oitomana n. Constantinopel, Kleinasien p 24; Weise (^^j. Adonia variegata Goeze Y3iV. neglecta u., var. ustulata n., var. macub'gera n., var. Orientalis n. ; Weise {^^) p 13. Anatis ocellata L. var. bicolor n., var. subfasciata n. ; Weise (^^) p 43. Anisosticta novemdecimpunctata L. var. thoracica n. p 14, var. conjuneta n. p 15, var. irregularis n. Nord- America, Oregon p 15 ; Weise (^'^). Aspidimerus laetus n., lepidus n. Birma; Weise (^) p 233. Brachyacantha bistripustulata F. var. guttata n. Colombia, Caracas; Weise (^) p 232. Brumus Olcesi Crotch = Micraspis tetradyma Fairm. ; Bedel (*) p 90 — lineatus n. Birma p 229, septentrionis n. Hudsons Bay p 230; Weise (^) — octosignatus Gebl. var. Gebleri n. Scharud; Weise (^^) p 55. Bulaea Lichatschovii Humm. var. suturella n., var. salina n. ; Weise (^^) p 41. Chilocorus nigropictus Fairm. ipicturatus Fairm.) = Exochomus quadripustulatus L. var. anchorifer All. ; Bede! (^) p 90 — rußcollis n. Celebes ; Weise (•) p 230. Chnootriba hippodamoides n. Congo, Stanley-pool ; Weise (') p 227. Clitostethus n. subg. für Scymnus arcuatus ^o^'&i und Abeilleiy^Q\'&Q\ Weise ('^) p 73. Coccidula villosa Fald. zu Lithophilus (Endomychidae) ; Weise (^^) p 61. Coccinella maritima Men. zu Semiadalia p 17, septempunctata L. var. ßoricola n., var. atomaria n., var. zapluta n., var. maculosa n. p 26, quinquepicnctata L. var. simulatrix n., vsiV . jucmida n. p 27, undecimnotata L. var. jt^wra n., var. vicina n. p 29, var. brevifasciata n. p 30, trifasciata L. var. fennica n., decempunctata L. var. Scribae n. p 34, [Harmonia] quadripunctata Pont. var. abieticola n. p 37, octodecimpunctata Scop. var. dubia n. p 37, duodecimmaculata Gebl. var. Fausti n., zonata n. p 38, quatuordecimpustulata L. var. e^sa n. p 39, lyncea Ol. var. remota n., var. asiatica n. Syrien, Armenien, Persien p 40, bisignata Fisch = ? Mysia oblongoguttata Jj . var. p 44; Weise ('^) — reditnita n. Turkestan ; Weise (1) p 234. Epilachna chrysomelina F. var. Costae n.; Weise (^^) p 8 — doryca Boisd. var. ma/or n. Macassar ; SchaufuSS p 209. Exochomus undulatus Weise var. septemmaculatus n. Taschkent p 53, melanocephalus Zoubk. var. apicalis n. Syrien, Jaffa p 54 ; Weise (^^) — snbcoeruleus n. Colom- bia; Weise [^) p 231. Halycia duodecimguttata Poda var. hispanica n. p 45, decemguttata L. vsiv./idva n. p 46, quatuordecimguttata Jj . var. ocelligera n.., vigintiguttata Li. var. tigrarian., octodecimguttata L. var. silvicola n. p 47, var. inundata n. p 48; Weise (^^). Hippodamia tredecimpunctata Ij. var. triloban., var. contortam. var. Gyllenhali n. , var. seZ/ate n. p 11 , septemmaculata Deg. var. baltica n., var. Payhdli n. p 12; Weise (^^). 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera, 339 Hyperaspis guttulata Fairm. = ? Marmottani Fairm. , Camillae All. = Marmottani Fairm. ; Bedel (^) p 90 — rejipensis Herbst var. syriaca n. Syrien p 57, var. effusa n. Samara p 58, desertorum n. Sarepta, Kirgisen-Steppe p 58, erythro- cephala F. var. Fausti n. Kirgisen-Steppe, polita n. Syrien, Kleinasien p 60 ; Weise (^^) — apicalis n. Fig. Portorico ; Weise (^^j p 167. Ithone hexaspilota Hope var. aethiops n.; Weise (^^) p 51. Macronovius n. subg. für Novius limhatus Motsch. ; Weise ('^) p 63. Micraspis sedecimpunctata L. ysx. ßavidula n., var. italica n. ; Weise (*^) p 42. Novius algiricus Crotch 1874 = algiricus All. 1870; Bedel (*) p 90 — (ilfacrono- vius) Bnbatus Mot&Gh. var. Fausti n. Taschkent; Weise (^'^j p63 ; cfr. Macronovius. Pharus Fleischen Weise var. moestus n. p 64, basalis Kirsch = Scymnus syriacus Mars, p 71; Weise (^^); cfr. Scymnus. Platynaspis luteorubra Weise var. Karamani n. Dalmatien ; Weise (^^) p 55. Scymnus van'ws Kirch ZU Pharus p 64, [Pullus] tibialisBris. = capitatus F. var. p 69, syriacus Mars. var. amoenus n. Syrien p 71, y^oSoiws Weise var. piceus n.iformi- carius Muls. ='( fulvicollis Muls. p 73, [Sidis] hipustulatus Weise = bigutiaius Muls., biguttatus Muls. var. semirufus n. Corsica , var. inßrmior n. [anomus Weise nec Muls.) Süd-Frankreich, Dalmatien p 75, anomus Muls. = biguttatus Muls. var., guttifer Muls., alpestris Muls. und bißammulatus Motsch. wahrscheinlich ebenfalls Varietäten des biguttatus Muls. p 75-76, [Sidis] tristis n. Algeciras, Corsica p 76, [Scymntis s. str.) nigrinus Kug. var. decipiens n. p 76 , major Costa = ? rußpes F. var. p 77, interruptus Goeze var. rufescens n. Italien, var. laetißcus n. Italien, Algier p 79, pulchellus Herbst var. bilunulatus n. Spanien p 81, incinctus Muls. = ? RedtenbacheriM.v\s. var. p 82; Weise {'^) — [Diomus] sphragitis n. p 236, scapularis n., pumilio n. p237 Süd-Australien; Weise (^) — vividus n. Maui, Ha- waii, Oahu p 146, ocellatus n. Maui, Oahu, discedens n. Oahu p 147; Sharp (^*); cfr. Stethorus und Clitostethus . Stethorus n. subg. für Scymnus minimus Rossi und gihifrons Muls. ; Weise (^^) p 74. Stilochotis Hilleri n. p 238, rufosignata n., Japan p 239, cinctipennis n. Siam, Dohrni n. Birma p 240 ; Weise Ö) — Deöye n. Sumatra; Duvivier (^) p 112. D. Faläontologisches. Scudder gibt eine systematische Übersicht über die fossilen Coleopteren und copirt die Abbildungen zahlreicher Arten. G. Quedenfeldt (^) beschreibt Elateridae 1, Cerambycidae 1 und Chrysomelini 1 aus Copalstücken von Benguela und Madagascar. Cardiophorus inclusus n. aus emem Copalstück von Benguela; 6. Quedenfeldt (^) . Hadroscelus n. Chrysomelini, verwandt mit Gonioctena^ Schenkel stark verdickt. Schulzii n. aus einem Copalstück von Benguela ; G. Quedenfeldt (•^) . Jbidion alienum n. aus einem Copalstück von Madagascar; G. Quedenfeldt (^). IX. Hymenoptera. (Referent: Prof. Dr. K. W. v. Dalla Torre in Innsbruck.) Über Anatomie etc. vergl. die Referate auf p 148, über allgemeine Insectenkunde am Schlüsse der Abtheilung. Adlerz, Gottfr. , Myrmecologiska Studier. I. Formicoxenus nitidulus '^y\. in: Öfv. Vet. Akad. Förh. Stockholm Arg. 41 1884 No. 8 p 43—64. 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[345—347] Anonym, The double Role of the Sting of the Honey-Bee. in : Psyche Vol. 4 p 2.51 — 252. [345, 366] A. Allgemeines. 1. Hülfsmittel. Dalla Torre (^) führt in Hagens Methode die hymenoptero- logischeu Arbeiten von F. F. Kohl, A. Förster, F. Rudow, P. Magretti, C. Ron- dani, T. A. Marshall, 0. Schmiedeknecht, C. Cz. Ritsema, R. Leuckart, K. Letz- ner, A. E, Holmgreu und 0. Radoszkowski auf. Dalla Torre (2) verzeichnet die hymeuopterologischen Arbeiten A. Försters mit historischen und kritischen Notizen ; eine als Frogrammarbeit veröffentlichte Studie über die Faunen der Hochalpen, Pontresina und Rosegthal, welche Chalcididen und Proctotrupiden enthält , wird republicirt ; desgleichen die hymeuopterologischen Notizen aus einer Monographie des Lousberg bei Aachen, gleichfalls als unverkäufliche Pro- grammarbeit publicirt. Überall ist der Verbleib der Typen angegeben, sowie die anschließende Literatur. Kriechbaumer unterzieht die hymeuopterologischen Arbeiten Kohl's einer kurzen sachlichen Besprechung ; Westwood gibt die Arten an, welche ihm in Duncan's »Bees« 1840 zuzuschreiben sind. 2. Morphologie. Mutilliden, Apiden Radoszkovsky (^ 2), Leuckart. 3. Abnormitäten. Apidae Perkins. 4. Biologisches, Diversa. Romanes ist der Ansicht, daß Bienen und Ameisen ihren Heimweg wieder finden, indem sie sich beim Ausfliegen oder Aus- gehen der Reihe nach Gegenstände merken ; Saunders (^j beobachtete unter Linden- Bäumen todte Bienen und Hummeln ; auf der Unterseite des Thorax und an der Spitze des Hinterleibs war ein Loch ; die Endsegmente waren weggerissen. Als Mörder wird Parus major angesehen. Vergl. auch Hoffer (^j, Ludwig; ferner Tenthredinidae Cameron (2, c) , Wüstnei ; Formicidae Langkavel, Roth, Adlerz, Bos; Fossores Mocsary (•''); Vespidae Hess; Apidae und Apis Grimm, Belle- voye, Hoffer (') , Czwalina, Anonym. 5. Phänologisches. cfr. Siricidae. 6. Beziehungen zur Pflanzenwelt. Tenthredinidae Brischke, Steinf^); Cynipidae Cameron ('^), Pasziavsky; Chalcididae Mayr, Giard, Riley (^), Forbes; Formicidae Will. 7. Schutzfärbung. Tenthredinidae Lucas (^j ; Cynipidae PaszIavsky. 8. Parasitismus. Cfr. Proctotrupidae , Braconidae , Ichneumonidae ; Chalcididae Mayr, Howard (^), Riley C^); Heterogyna Radoszkovski (2); Apidae und Apis Friese, Hoffer (^). 9. Krankheiten. Apis Cheshire. 10. Schaden und Nutzen. Stainton constatirt, daß nun Hummeln (Ge- schlecht?) erfolgreich in Neu Seeland eingeführt worden sind — zur Bestäubung des Klees; Tenthredinidae Lucas (2, ^j; Chalcididae Riley (^), Forbes; Formi- cidae Fowler; Apidae und Apis Bessler, Cowen, Huber, Pollmann. 346 Arthropoda. 11. Nester und Nestbau. Formicidae Blochmann, Roth, Todd; Fossores Roth; Vespidae Landois, Girard, Roth, Lucas {^), Maindron; Apidae und Apis Hoffer (3, 5), Dalla Torre {^), Künckel, Bott. 12. Dimorphismus. Chalcididae Mayr. 13. Sexuelle Unterscliiede. Apidae Dalla Torre (*). 14. Jugendformen. Tenthredinidae Stein (2), Carpentler, Gadeau (2); Fos- sores Sickmann (^j. 15. Parthenogenesis. Apidae Ulivi (S ^j. 16. Entstehung der Geschlechter. Apidae Favre, Curley (S ^). B. Faunistik und Systematik. 1. Faunen. Mehrere oder alle Regionen. Evaniidae Schletterer. Paläarctische Region. Sjjhex (Fossores) Kohl (^), Apidae Schmiedeknecht — Europa: Formicidae Andre, Sphecodes (Apidae) Saunders (^) — Britannien: Formicidae, Fossores, Apidae Saunders (2); Ders. (*) fand im August beiChobham: Myrmica sulcinodis l^jX. , Methoca ichneumonides Ltr., Pompilus chalybeatus Schdte., Mimesa hicolor Jur. , Crabro scutellatus Schv. , Andrena argentata Sm, , Nomada alboguttata H.-S. und Andrena lucey^s Jmh. ; Ichneumonidae Bridgman & Fitsch; Tenthredinidae Cameron (2,3); Braconidae Marshall; Aculeata Perkins — Schweiz: Haller — Brüssel: Bormans — Frankreich: Apidae Perez; Poujade beobachtete an einer Stelle in Seine-et-Oise unter einander fliegend folgende grabende Hy- menopteren und Parasiten : Anthophora parietina Fbr. fsehr häufig), Anthophora pilipes Fbr. und Anthophora personata III. , Halictus minutus Kby. , Sphecodes G eo/f rellus Khy., Trypoxylon ßgidusl^., Coelioxys rufescens Lep. (sehr häufig), Chrysis ignita L., Monodontomerus obscurus Wstw. und Foenus affectator Fbr. — Spanien: Antiga, (Catalonien) Cuni y Martorell — Sardinien: Costa — Sicilien: Destefani (^) ; Destefani (2) fing auf den Bergen von Renda : Apis mellißca^ Bambus sylvarum (die einzige Hummelart), Chalicodoma muraria mit Meloe erythrocnemis Pall., Trichodes alvearius, Hapalus bipunctatus, dann Dioxys pyrenaica Lep. und Stelis nasuta Latr. sowie Osmia cornuta, laticincta Prz. und cyanea Fbr. als Parasiten und Einwohner. Riggio verzeichnet von der Insel Ustica: Eurytoma atra Nees, Parasit in Capparis spinosa L., Ellamjms auratus L., Stilbum amethysHnumYhx. var. yes^/vMW Mocs. , Mutilla rubrocincta Liwc . , Pelo- poeus spirifex Fsibw, Sphex ßavipennis Fbr., Vespa orientalis Tu . , Eumenes pomi- ßormis FhT., Odynerus parvulus Ijeiß . , Camponotus sylvatia/s Ol., Aphaenogaster harbara L., Prosopis clyptearis Schck., Halictus Scabiosae Rossi, gemmeus Dours, Nylanderi Mor., Anthophora nidulans Lep., Xylocopa violacea Fabr. — Deutsch- land: Vespidae Alfken; Allantus Stein (^); Tenthredinidae Wüstnei; Fossores Sickmann (2) ; Ders. (^) zählt 26 sp. von der Insel Spiekerooge auf (3 sp. nach Heß), die Terebrantia sind nicht berücksichtigt. Wessel's unrichtige Bestimmun- gen sind corrigirt. — Bosnien: Hoffer (*) verzeichnet aus Travnik 15 Bombus- arten, von denen B. mastmcatus in auffallend dunkler Färbung, B. pomorum Pz. in der Form mesomelas Gerst. häufiger und B. vorticosus Gerst. einzeln vorkommt, dann 4 Psithyrzisarteu — Ps. lugubris Krchb. stammt aus Fiume ; ferner Xylo- copa violacea, Anthophora pilipes, Eucera longicornis und Osmia bicornis L. — Von Vespa kommen 6 Arten vor : V. Crahro, vulgaris, germanica, silvestris, rufa und 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera. B. Faunistik und Systematik.. 347 saxonica. Alle Arten finden sich unter denselben Modalitäten wie bei uns. — Rußland: Apidae Arnold — Ungarn: Ichneumonidae Mocsary P); Birö gibt ein ausftthrlicbes Verzeichnis der Hymenopteren , namentlich Apiden und Ten- thrediniden, weniger der Ichneumoniden der Ost-Karpathen mit Hervorhebung der characteristischen und nur dort vorkommenden Arten. Nearctische Region. Chaicididae Ashmead (*, ^), Howard (^); Cynipidae Ashmead p). Neotropische Region. Mittel-America : Cameron {^) ; Apidae Holmberg. Australische Region. Vergl. Roth. 2. Systematik nnd Fannistik der Familien. Familie Tenthredinidae. Nach Brischke lebt : Nemahis fallax auf Salix aurita, Nemaius histrio auf Salix alba und Populus tremula, Nematus mollis auf Vaccinium myrtillus , Blennocampa won/ico/a auf Gras (?), Seiandria aper fa a.vS'idjo^oii^, Hylotoma segmentaria ? auf Eichengebüsch, Taxonus glahratus auf Viola tricolor, Emphytus succinctus ? auf Rosen, ScMzocera fuscicomis Thoms. ? an intermedia Zdd. ? auf Orobus tuberosus. Andere Zuchten mißlangen. Stein (^j beschrieb die Afterraupen von 7enif/irec?o r?<- ßpes Klg. auf Senecio silvaticus L., S. nemorensis L. und in der Gefangenschaft auf S. viscosus L. p 245; dann von Seiandria aperta Hrtg. auf Myosotis palustris L. p 248 Fig. (daraus auch Mesochorus) ; ferner von Nematus albipennis Hart, auf Polygonum persicaria p 302 und Nematus puncticeps Thoms. auf Vicia Cracca p 303. Carpentler beschreibt die Metamorphose von Cladius pectinicomis . Gadeau de Kerville (^) beschreibt die Metamorphose von Monophadnus iridis Kalt., er fütterte die Larve mit Iris germanica. Biologie von Euura s. Cameron ("). Lucas (2) berichtet, daß Hoj)lücampa ferruginea Yhx . (= brunnea Klg.) an Pflaumen in Villeneuve-sur-Lote verheerend auftrat. Lophyrus pini trat schädlich auf im Dep. Cher, die Larve zeigte Schutzfärbung mit den Kiefernadeln ; Lucas (•^). Wüstnei führt 276 sp. aus Schleswig-Holstein auf mit kritischen und biologi- schen Notizen begleitet. Stein (^) verzeichnet von Deutschland-Österreich 17 Al- laiitusSiYten. Haller fing bei Zürich Allantus costalis Klg., Macrophya antennata Klg., militaris Klg., Tenthredo olivacea Klg., Emphytus rufocincius Retz., Dolerus leucopterus Zdd., saxaiilis Klg., Lyda histrio Ltr. Camoron (^) gibt analytische Übersichtstabellen und ausführliche Beschreibungen der in Britannien einheimi- schen Cimbiciden [Cimhex 4, Trichiosoma 4, Clavellaria 1), Abiiden [Abia 3 incl. Zaraea 3, Amasis 2), Hylotomina {Hylotoma 13, Schizocera 2), Lo- phyrina [Lophyrus 6), Lydina [Pamphilius 13, Megalodontes 3) und Xylina [Xyela Jtdii Breb.). Saunders {^) glaubt aus dem Grunde, daß Megalodontes plagiocephalus auf ein Stück in Shuckards Sammlung als in Britannien vorkom- mend angegeben wird, nicht für die Echtheit der Angabe bürgen zu können, da viele Fossorien in dessen Sammlung thatsächlich in Britannien nicht vorkommen. Cameron ('') neigt sich der Ansicht zu, das Megalodontes plagiocephalus, seit Leach und Stephens in Britannien nicht mehr aufgefunden, doch Bewohner Britanniens sei. Cameron ('-) behandelte kritisch, biologisch und systematisch die Nematinen Britanniens. Landsdell theilt mit, daß die Zahl der Tenthrediniden im Zaraf- 348 Arthropoda. shan-Thale (Turkestan) niclit groß ist ; merkwürdig sind neben regulären q^ flü- gellose Q einer Selandriide, deren Thorax geschwollen erscheint. Vergl. Biro. Konow (^j beschreibt Q (bisher unbekannt) und q^ von Dolerus taeniatus Zadd. Derselbe (^) Eriocampa ovata (^. Allmitus bicinctiis Klg. = AUantiis vespa (Deg. ), bifasciatus Klg. = Allantiis Rossn Panz., distingtiendus n. (= ::o?m Thoms. non Klg.) p 117, xanthorms Kriechb. = Allantus Dahin Klg., zona Thoms. (non Klg.) = distinguendus n. ; Stein (*) . Blen7iocampa /uligi7wsa Urtg. (non Klg., Lep.) = Sl. &?-mcorms Brischke, intermedia n. Q Triest-Lippiza ; Kriechbaumer (^) p 143. Dmetira selandriiformis Cam. = ? Mesoneura selandrnforniis (Cam.), sidcifrons n. Q^, Q Corvin a. d. Persante p 296, testaceipes T\iom^. = veniralis Zaäd. ; KonoW (3) — anthracinus Hrtg. (^ = nitens Zadd., anthracinus Zadd. (^ = co?'a«M? ?"• ''^edullae n. Q p 8, qu. gemmaria n. Q, qu. capsuala n. 2 P ^ Florida; Ashmead (^) — eancae Hass. = Philotrypesis caricae (Hass.) ; Mayr — inanita L. = Chclonus inanitiis (L.) Nees et aut. ; Marshall. Familie Chalcididae. Ashmead (^) promulgirt Separata seiner Arbeiten über Chalcididen. — Mayr theilt die Feigenbewohner in 1) Gallenerzeuger, welche in den Fruchtgallen den Larven- und Puppenzustand zubringen (wahrscheinlich alle Agaoninen, sicher die Arten von BlastopJmga.) 2) Parasitische Hymenopteren, welche von den Larven oder Puppen der Agaoninen leben, und 3) Feigenbesucher, welche im entwickelten Zustande in das Innere der Feigen eindringen, sich wahrscheinlich von dem Safte derselben und etwa auch von den zu Grunde gegangenen (^ der Feigenbewohner nähren und die Feigen wieder verlassen; die Gruppen sind nicht scharf ge- schieden; bei allen Arten ist der Dimorphismus hervorragend entwickelt. — Riley (S^,) beschreibt als Parasiten von Cecidomyia destructor mit Angabe von biologischen Notizen, Synonymie etc. Merisus destructor Say, Eupelmus a/yniVFrench, Platygaster Herrickü Fa.ck. und 2 n. sp. und bildet alle ab. — Aphelmtis diaspidis ist Parasit von Mytilaspis auf einer Dycasta-Art aus Japan; Chalcis ovata Say von: Thyridopteryx ephemeraeformis, Apatura Clyton, Aletia xylina, Desmia maculalis, Cacoecia rosaceana, Gelechia gallae-solidaginis, Botys alnialis ; Chalcis rohusta Cress. von Lagoa opercularis und Papille Cresphontes ; CUhneurus albicornis How. von Lecanium auf Quercus aquatica; Coccophagus cogtiatus How . von Lecanium auf Melia azederach ; Euplectrus ComstocU How. von Aletia xylina Say in Missis- sippi, Alabama, Florida ; Spilochalcis mariae Eil. von Antheraea Polyphemus, Samia Cecropia, Callosamia Promethea, Attacus Cynthia, Thyridopteryx ephe- meraeformis ; Spilochalcis a/Ä?/rons Walsh von Pezomachus minimus nach Howard (^) — Giard beschreibt die Lebensweise von Eurytoma longipennis Walk, in Psamma arenaria L. (»oyat«) zu Wimereux. — Riley ("^) beschreibt und bildet ab Isosoma fritici, hordei und grande mit Angabe des Schadens, der Metamorphose u. s. w. — Forbes beschreibt Eupelmus Allynii Fvench. Q , (J^ , Semiotellus destructo?--Ssij Q, (^ und die Lebensweise von Isosoma grande Ril. Howard (^) verzeichnet nach Gattungen alphabetisch die bisher bekannten Chalcididen Nord-Americas mit Angabe der ersten Beschreibung ; Smicra weist die größte Artenzahl auf; Verf. gibt p 31 eine Liste der ihm bekannt gewordenen Chalcididen mit deren Wirthen. — Smicra Burmeisteri Kby. stammt nicht aus der Argentinischen Republik, sondern aus Rio Janeiro; Kirby (^) p 243;[vergl. Pou- jade, Riggio. 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera. B. Faunistik und Systematik. 351 Acerophagus coccois Smith = Rhopus coccois (Smith) ; Howard ('). Aepocerus n. g. mit excavatus n. Q. p243 ; emargmatus n. Q , simplex n. Q. ,ßavoma- culatus n. (j^ p 244, putictipennis n. (J*, inßaticeps n. Q^ p 245 Fig. St. Catha- rina ; Mayr. AmoUira n.g. von .^es^ems im Bau des Ovipositor und der hinteren Beine abweichend, mit anmdicornis n. Nicaragua; Cameron (^) p 131 Fig. Apkycus brimneus n. Q. aus Diaspis rosae, Vineland, ceroplastis n. Q., (^ aus Cero- plastes artemisiae Ril., Neu-Mesico, macuUpes n. Q.,<^ aus Lecanium auf Quercus aquatica; Howard (') p 18. Apocrypta paradoxa Coq. = ? Sycophaga sgcomori [H.3iS,&.) , perplexaCoq. = Sycophaga perplexa (Coq.) ; Mayr. Artichus tischeriae Brunn. = Derostenus ttsc/ieriae (Brunn.); Howard ('). Blastophaga hreviventris n. § , (^ inFicus, Ostindien p 172 Fig., clavigera n. Q. , (^ in Ficus elastica, Buitenzorg p 174, socotrensis n. 2 > cf ^^^ Ficus salicifolia, So- cotra p 175, quadraticeps n. ^ , (J' in Ficus religiosa, Singapore p il^, javana n. Q, (;5^ in Ficus hirta v. setosa, Buitenzorg p 179 Fig., brasiliensis n. 2? CJ' ß^^~ menau p 180, bifossulata n. Q , cf p 181 Fig., Blumenau, Mayens, (j^ in Ficus, Island of Bally p 182, qiiadrupes n. Q, (j^ in Ficus diversifolia BI. auf Java p 183; Mayr. Bothrothorax virginiensis n. Q Arlington, peculiaris n. 2 ' CJ^ aus Syrphidenlarve, Arlington, Va. ; Howard {^) p 20. Callimome lividus n. Q. , dryorhizoxeni u. Q. aus Dryorhizoxenus floridanus Ashm., melanocerae n. Q aus Cynips melanocera Ashm. mscr. und citriformi[s\ n. Q aus Cynips citriformis Ashm., Florida; Ashmead (*) p 13. Ceraphron destructor Say = Setniotellus destructor (Say) ; Howard (^). Ceratosolen n. subg. v. Blastophaga mit appendiculata n. Q , (^ in Ficus umbellata, Buitenzorg p 164 Fig., occultiventris n. Q in Ficus panifica Del. im tropischen Nilgebiete p 166, fusciceps n. Q , (J' in Ficus glomerata, Java p 167 Fig., Solmsi n. QjCT in Ficus canescens, Buitenzorg p 168 Fig., constricta n. Q, (^ in Ficus subopposita, Buitenzorg p 169 Fig., bisulcata n. Q, (^ in Ficus lepicarpa, Buitenzorg p 170, crassitarsus n. Q. , (^ m Ficus Ribes, Bandong (Java) p 171 ; Mayr. Chalcis citi-mus Gallesio = Philotrypesis caricae (Hass.) Mayr — columbiana n. Q. Cohimbia, tachinae n. Q. aus Caloptenus atlanis Rib. ; Howard (^) p 8 — ßavipes n. cf Florida; Ashmead (^) p H- Chiloneurus dtibtus n. (;f aus Lecanium, Lancaster, dactylopii n. aus Dactylopius destructor Comst., Washington; Howard {^) p 17, Cirrospilus esurus a\\. = Tetrastichus Cdurus (Ril); Howard (^). Cleonymus clisiocampae Fitch = Semiotellus clisiocampae (Fitch); Howard (^). Coccophagus annulipes How. = Apkycus annulipes How., vividus n. Q. , (J^ aus Leca- nium hesperidum, Crescent City p 24, ßavifrons n. (^f aus Lecanium auf Pinus australis, Koebelei n. (J^ ibid., Archer, Fla. p 25; Howard ('). Colyostichus n. g. mit longicatidis n. Q, brevicaudis n, ^ St. Catharina; Mayr p 239. Cowiys albicoxa n. ^jCT ^"^ Dactylopius adonidum L., Florida; Ashmead (^) p 16. Copidosotna gelechiae n. 2, (J' ausGelechia gallae-solidaginis, Columbia p 10, vagum n. 5,(3^ aus Gelechia pseudacaciella Chb., Missouri p 11, celaenae n. Q. aus Celaena renigera, St. Louis, Mo. pH, intermedium n. 2, (^ aus Gelechia gallae- asterella Kell, Vineland p 12 ; Howard ('). Critogaster n. g. mit singidaris n. (^ p 200 Fig., pilwentris n. (^ p 201 Fig., ?zMf/a n. (3f p 201 St. Catharina; Mayr. Crossogaster n. g. mit triformis n. Q , (^ in Ficus salicifolia, Socotra; Mayr p 192 Fis-. 352 Arthropoda. Decatoma ßavicollis n. §> cJ' Florida ; Ashmead (*) p 13 — longiramulis n. Q , c^ p 229, aequirumulis n. 2, (^ , breviramulis u. Q, (^ p 230, St. Catliarina ; Mayr. Derostenus [Closterocerus) sp. aus Spilochalcis oder Sympiezus ; Howard (^j p 118. Dimnorus variabilis n. $ , cf Blumenaii; Mayr p 228. Elachistus proteoteratis n, Q ans Proteoteras aesculana Ril., Kirkwood, Mo. p 27, cacoeciae n. aus Cacaecia rosaceana oder Hyphantria textor, Kirkwood, Washing- ton, coxalisn. ^ Washington p 28; Howard ('). Elasmus varhis n. (^ aus Gracillaria rhoifoliella Cham. (?), S. Louis p 30, nigripes n. (^ aus LithocoUetis gregariella Mrtf., Kirkwood, albicoxa n. (^ aus Limenitis dissippus Godt, Kirkwood, pullatus n. (j^ aus Tischeria malifoliella (?), Kirkwood, tischende n. Q. aus Tischeria solid aginifoliella, Columbia und Nord- Virginia p 30 ; Howard (i). Encyrtus lacAnt n. Q aus Lachnus australis Ashm., schizoneurae n. Q, (J' aus Schi- zoneura aquatica Ashm., albocinctus n. Q aus Gallen von Quercus dentatus, Flo- rida; Ashmead (^; p 16 — sublestus \i.(^ aus Lecanium, Archer, Fla. pl2, ensifer n. ^'CT aus Aspidiotus corticalis Ril., Crescent City, Fla. p VZ , fuscicomis n. Q Odenton, pl3, puncticeps -q.. Q. , Arlington, Va. pH, trioziphagus n. Q , (J' aus Trioza diospyri p 14, solus n. Q. aus Trioza magnoliae, Gainesville p 15, pachy- psyllae n. 2 ? cT aus Pachypsylla celtidis-gamma Ril., S, Maryland p 15, ceci- doniyae n, § , (^f aus Cecidomyia salicis-siliqua Walsh, Nord- Virginia ; Howard (i)pl6. Epistenia balteata n. Q,(3f Guatemala p 129 Fig., maculipes n. Q,c;f p 130 Fig., rußpes n. Q Panama p 130; Cameron ('). Eupehnus hirtiis n. 2 ' cf ^^^ Thyanta cristator Fbr., mantis n. Q, (J^ aus Mantis Carolina, conigerae n. Q, aus Cynips conigera Ashm., Florida; Ashmead [^] p 15. Euplectrus marginatus n. 2 ; cT ^^^ Noctuidenlarve, Florida; Ashmead (^) p 18 — leucotrophis n. (^ aus Arctiidenlarve, Fort George, Fla., platyhypenae n. Q aus Platyhypena scabra Fbr., Columbia p 26, catocalae n. ^,(^ aus Catocala sp., St. Louis, /ron^rt^/s n. Q. aus Noctuidenlarve, Arlington, Va. p 27; Howard (^j. Eurytoma obtusilobae n. Q , cf ^^^ Gallen von Quercus obtusiloba p 12, Florida; Ashmead (^) p 12. Ganosoma n. g. mit robustum n. (J^ Fig. , parallelum n. <^ , attenuatum (j^ St. Catliarina ; Mayr p 204. Goniogaster n. g. mit vm-icolor n. Q in Ficus subopposita, Buitenzorg; Mayr p241. Haltichella americana n. Q. Washington ; Howard (*) p 9. Heterandrium n. g. mit longipes n. (^, undiventre n. (J' p 235 Fig., uniannulatum n. Q,(;fFig. biminulatum n. Q,(^, IS-articidatumn. Q St. Catharina p 237; Mayr. Homalotylus obscurus n. Q aus Cycloneda sanguinea L. (?), Centreville Fla. ; Ho- ward (1) p 22. Hookeria zvi Haltichella] Howard (^) . Idarnella Westw. = Philotrypesis Forst. ; Mayr. Isosoma nigrum n. Denton, Michigan, Weizen; Cook p 804 Figg. Kradibia Saund. = Blastophaga Grav. ; Mayr p 188. Lelaps albipes n. Q Panama p 132 Fig., ferruginea n. Q Fig., tibialts n. Q, Pa- nama p 133; Cameron (^j. Leptomastix dactylopii n. ^jCT ^^"^ Dactylopius destructor Comst.^ Washington; Howard [^) p 23. Leucopsis coxalis n. Q Buenos Ayres; Kirby (^) p 243. Merisus [Homoporus] subapterus n. Q. , (^ aus Cecidomyia destructor; Riley (^) p 416; (2) p 1104. Metallus n. g. mit rubi n. auf »Blackberry Leaf«, Illinois; Forbes p 87 Fig. Namocerus n. g. mit biarticulatus n. Q^ St. Catharina; Mayr p 196 Fig. 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera. B. Faunistik und Systematik. 353 Ormyrus dryorhizoxeni n. ^ aus Dryorhizoxenus floridanus Aslim., rosae n, Q. aus Rhodites ignotus Os. und labotus Walk aus Cynips ficigera Ashm., Florida; Ashmead (""j p 14. Otitesella serrata n (^f in Ficus salicifolius Valil, Socotra ; Mayr p 211. Perilamptis ffloriosiis Walk. = Euperilampus gloriosus (Walk.); CaiTieron ('). Phasgonophora zu Haltichella \ Howard ('). Philotrypcsis spinipes n. Q. , (^ m Ficus subopposita und lepicavpa, Java p 223, bhna- culata n. Q Buitenzorg, minuta n. Q. , (^ m Covellia Ribes, Java p 224 ; Mayr. Ihjsotliorax disciger n. ([J' p 198, annuliger n. Q^ St. Catharina p 198 ; Mayr. Plesiostigma n. g. mit bicolor n. (^ Blumenau ; Mayr p 227 Fig. Polanisa Walk. = ? PMlotryjicsis Forst. ; Mayr. Prionopelmus pilipes n. Nicaragua; Cameron (') p 134 Fig. Psilnphrys Jiyalinipennis n. (^ Missouri; Howard (') p 21. Pleromalus paUlpes n. aus Cecidomyia destructor Say, Du Quoin, Perry-couuty p 46 Y\^., fulvipes n. ibid., Illinois p 47 Fig. ; Forbes. Sendotelhis ßcigerae n. (^, Q aus Cynips ficigera Ashm. Florida; Ashmead (*) p 17. Smicra Bcrgi n. Q^, ^ Buenos Ayres aus Oeceticus platensis Berg; Kirby (^) p 244 — vittata n. 5, hirtifemora n. (^, lougipetUda n. (J^ Florida; Ashmead ("*) p 10. Spüochalcis missouriensis n. Q. Saint Louis, Mo. p ü, viretis n. (J^ Jowa p G, odontofae n. (_f aus Odontota scutellaris p 7; Howard (^). Sycoryctes n. g. m\i patellaris n. Q. , (^ in Ficus umbellata und giomerata, Java p 215 Fig., simplex n. ^ , (^ in Ficus hirta , Buitenzorg p 216 Fig., coccothra^istes n.. 5, cf p 217 Fig. und truncatus n. (f in Ficus salicifolia , Socotra p 218 Fig.; Mayr. Sympiezus uroplatae n. q^ Washington aus Odontota (Uroplata) suturalis ; Howard (-) p 117. Tetragotuispis n. g. mit ßavtcollis n. Q p 207, graciUcorms T\. ^ Fig., fortlcornis n. 5 p 208, co)'eartan. Q, hrevicollis n. Q. , pwietata n. ^ p 209 St. Catharina, testacea n. Q in Ficus giomerata?, Java p 210 ; Mayr. Tetranemus floridanus n. (^ Florida; Ashmead (^) p 18. Telrapus n. g. mit amcricanus n. Blumenau ; Mayr p 188, Tetrastichus carinatus n. aus Cecidomyia destructor Say, Illinois; ForbOS p 48 — lecanii n. Q aus Lecanium sp., Florida; Ashmead (^) p 19 — productus n. Q. , (^ aus Cecidomyia destructor; Riley (*) p 419, (2) p 1104. Thoracanthafloridana-a. q^ Florida ; Ashmoad (-) p 95 — floridana K^\\m. $ , cT aus Hex glaber-Gallen, Florida ; Ashmead (^) pH. Tric/iaulns n. g. mit versicolor n. Q. , c;^ Blumenau ; Mayr p 226 Fig. Trichogramma oduntotae n. Q,(J^ Washington aus Odontota suturalis; Howard \^) p 117. Familie Pr o c t o t r u p id a e. MXook berichtet von einem Proctotrupiden, welcher auf Attus audax parasitisch lebt und nach Howard vermuthlich n. g., n. sp. Sceliominorum ist. Bignell (-) be- obachtete Telenonms phalaemirum Nees {= helnms Walk.) als Parasiten in den Eiern von Bombyx trifolii und Smerinthus ocellatus. Capron fing Dryinus formtcarius an einem Gebüsch mit Rhinocola aceris, glaubt jedoch, daß dieses Insect als dessen Wirth zu klein sei, und daß es sich möglicher Weise in dem daselbst beobachteten Cixius contaminatus entwickle. Familie B r a c o n i d ae. Bignell (') erzog Bracon larvigatus Rtz. aus Nematus gallicola-Gallen an Salix viminalis. Bignell (^) bemerkt, daß Apantelrs glomeratus zu 45, ja selbst zu 99 Zool. Jaliresbericlit. lsS5. 11. 23 354 Arthropoda. Stücken an Pieris brassicae beobachtet wurde. Bigneli (^) bericbtet, daß in einer Raupe von Smerinthus ocellatus 62 Stücke von MicropUtis ocellatae gefunden wurden. Bigneli (^) fing Micro ff asier alvearius in 133 Stücken an der Larve von Boarmia gemmaria (rbomboidaria) ; sclion früher einmal fand er 95 Stücke. Mar- shall beschreibt die Braconiden Britanniens, soweit sie zu den Cyclostomen, Cryp- togastres und Areolarii Wesm. gehören, gibt ihre Synonymie und reichliche Wirthstabellen. Acoelms germanus Marsh. = Acoelius suhfasciatus Hai. var. ; Marshall. Agathis anglica n. Q. , (^ aus Coleophora albitarsella Zell, und Depressaria nervosa Haw. ; Marshall p 265. Aleiodes alternator Wesm. = Rhogas geniculator Nees, Irevicornis Wesm. = Rhogas dimidiatus Spin., nigriceps'Wesm. = Rhogas circumscripttts l^ees, nigripalpisWesva. = Rhogas dimidiatus Spin. ; Marshall. Allodorus palUdus Reinh. = lepidus (Hai.) ; Marshall. Anisopelma helgicum Wesm. = Hecabolus sulcaius Curt. ; Marshall. Apanteles aciiminatns Reinh. = «??a& Nees, annularis Reiuh. = cmarginaius "Nees, hre- mc'or»w Reinh, = senW?/s Nees, salebrosusu. § aus Oporobia dilutata Bork-Schott- land p idb, femigincus n. [Reinh. MS.] aus Chilo phragmitellus Hbn., BignellU n. 2 , (^ aus Melitaea aurinia Rott. North Devon, p 172, limbatus n. ^ , (J' aus Ab- raxas grossulariata p 17 3, rubecula n. Q. aus Pieris rapae L. p 175, Giryonis n. 5 aus Procris Geryon Hbn. p 180, zygaenarimi n. Q , (^f aus Zygaena filipendulae und Hemiteles fulvipes p 181, jucimdus n. ^ p 182, nothus n. [Reinh. MS.] aus Anticlea badiata Hbn., Epinephele Janira L., Melanippe galiata Hbn., Tethea retusa L. und Spilosoma meuthastri Esp. p IS 6, laetus n. ^ aus Gracilaria semi- fassia und Eupoecilia ciliella Hbn. p 189, cnltrator n. Q p 192, praetor n. QjcT aus Catoptria aemulana Schi. Devon p 197, waso n. (J' Devon p 203, Halidaiin. Q_, 0^ [= albipennis Hai. non Nees, Ratz.) aus Ptochenusa inopella Z., Coleophora limoniella Staint., Gracilaria ononidis Z. Britannien p 206, sicurius n. aus Diasemia literata L. Devon p 209, abjectus n. Q aus Lophopteryx camelina L. und Noto- donta dromedarius L. und dictaeoides Esp. Britannien p 211, cabcrae n.Q, (j^ aus Cabera pusaria L., Jodis lactearia, Seleuia biluuaria Esp. und Homaspilis margi- nata L. p 214, lautdlus n. Q aus LithocoUetis lautella Zell., lautanella Schrk., cavella Zell., Gracilaria semifascia Haw. Britanien p 219; Marshall. Ascogaster bidenttdus Reinh. = rußpies (Latr.), Esenbeckii Gurt. = imiabilis Wesm., pallida Ruthe = i7is(abilis Wesm., Ratzeburgii n. (^ Brundall ; Marshall p 146. Brachistes J'agi lla,\z. = Sigalphus pallidipcs (Nees); Marshall. Bracon erythrostictus n. Q , (J' Milford llaven aus Galleu au Triticum repens, exarator n. [punctulator var. ß) 5» C? Norfolk p 26. tornator n. 2' cT Britannien p 32, fraudator n. Q Schottland p 34, epitripttis n. 5,(;J' Britannien p 35, praetermissiis n. [immutator var. 2 Wesm.) ^jcf Britannien p 37, otiosus n, ^ Britannien p 42, degenerator n. ^ Leicestershire p 44, barypus n. § Neton p 47, bi.sig7iatusWGSin. = oscnla/or Nees, dimidiatus Nees = ? Phanomcris cafenator Hai. ; MarshatI — geni- culator n. Q, hmnerator n. (^ Sardinien; Costa p 2S — i7nmutator yhy. 2 Wesm. = practermissus n., lanceolator Nees = Oncophanesi lanccolaior Nees, orbitator Nees = Clinocentrus exsertor Nees, praecisus Ratz. = Doj-yctes imperator Hai., 2JU7ictulator var. ß Nees = exarator n., spathüformis Ratz. = Doryctcs spathii/'o7-t7iis Ratz.; Marshall. C'hclu7ws a7itillur7im, n. ^ , (j^ Westindien, Barbados, Martinique, Antigua p 1 18 note, carbo7iator u. Q. , q^ Britannien p 123, spec7tlator n. ^ Nunton p 126, corvidus n. {a7mulipes var. 1 Wesm.) ^'Ö^ Britannien p 127, deco7-us n. Q Britannien, dispar n. Q,c^ Dareuth Wood, Mitford Haven p 130, catulus n. o^ Nunton p 132, 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera. B. Faunistik und Systematik. 355 piisio n. Q. ,(f in Elachista atricomella Staint. p 133, secutor n. c^ Nunton p 135, latnmculus n. ^ , (J' Glasgow, Maldon p 138, exilis n. Q, (J' Warren ans Cosmo- pteryx Lienigiella p 139, ammlipes var. 1 Wesm. = corvulus n. ^, (J^, cont7-acttis Nees = stilcatus Nees, e^crytheca Wesm. = parcxeomis Schaff., femoralis Schaff. = Ascoffasier instahilis W esm . ^ fe^iesiratus Nees = sulcatus Nees, impressus H.-Sch. = Ascogaster quadridentatus Wesm., laevigator Ratz. = Ascogaster rußdens Wesm., luteicornis H. -Schaff. = Ascogasiet' armatus Wesm., muUiarticidatus Ratz. = Asco- gaster rxißpes (Latr.), oculator Dahlb. et aut. = inanitus (L.) , /;«7Z?};es Schaff. = Ascogaster rvfipes (Latr.), quadridens H.-Sch. = Ascogaster quadridentattis Wesm., rufipes Schaff. = Ascogaster riifidens Wesm., rufiventris Schaff. = Ascogaster in- stahilis Wesm., similis Ratz. = Ascogaster qiiadridentattis Wesm. ; Marshall. Coeloides {nitiatelliis Ratz. = Coeloides scolyticida Wesm.; Marshall. Colastes fragilis Hai. = Phanomeris fragilis (Hai.), lanceolator Hai. = Oncophanes lan- ceolator (Nees) ; Marshall. Dinocampus pallidipes n. Sardinien; Costa p 27. Doryctes tahidus Hai. = striatellus Nees, ohliteratus Hai. (non aut.) = spathiiformis Ratz.; Marshall. Eürinus afßnis Wesm. = gloriatorms Panz., dehisor Wesm. = gloriatorius Panz., zo- natus n. (J^ ans Enpoecilia notulana Zell. ; Marshall p 2G8. Eubadizon leptoccphalus Hart. = Orgilm ohscxirator ^ees] MarShall. Exot Accus abnormis Wesm. = Phanomeris catenator Hai., analis Wesm. = CUnocentrus cunctator Hai., harhatus Wesm. = Colastes variolator Hai., dehilis Wesm. = Colastes braconius Hai., laevigatus Ratz. = ? Oncophanes lanceolator (Nees), marginellus Wesm. = CUnocentrus excubitor Hai., minntus Wesm. = Oncophanes lanceolator (Nees), rvßcej)s Wesm. = Colastes decorator Hai., tuherctilatus Wesm. = Rhyssahis indagator Hai. ; Marshall. Helcon hclveticvs n. ^c\vfie\z^ Bürgenstock; Hallerp 201, Ileteroganivs crypticornis Wesm. = dispar (Curt.) ; Marshall. Ho7-mius piciventris Wesm. = moniliatus Nees; Marshall. Ischiogomis ohliteratus Wesm. = Doryctes striatellus Nees, zona^«« Wesm. = Doryctes Imperator Hai. ; Marshall. Macrocentrus procerus n. ^ Sardinien; Costa p 27. Macropalpus leptoccphalus Ratz. = Orgilus ohscurator Nees; Marshall. Meteorus splendens w. Q. , scutatus n. § Sardinien; Costa p 26. Microchis abscissus Ratz. = calculator Fabr.; Marshall. Microgaster scoticus n. (^ Schottland p 251, novicius n. Q. , c^ Schottland p 252, hospes n. 5'Cf Schottland, spretusn. Q aus Rhodophaea consociella Hbn. p 259, polittis n. (J' Wilts p 260 ; adunca Ruthe = Micro^üitis adunca Ruthe , albipennis Hai. (non Nees, Ratz.) = Ajumteles Halidayi n. Q.,(;^ , albipennis var. ß. Nees = Apanteles imjmrus Nees, annularis Hai. = Apanteles emarginatus Nees, annulipes Hai. = subcompletus Nees, ardeaepenellae Bouche = Apanteles hicolor Nees, arena- rius Hai. = Apanteles obscurus Nees, basalis Steph. = russatus Hai., brevicornis Wesm. = Apanteles sericeus Nees, canaliculatus Wesm. = Microplitis ocellatae Bouche, candidatus Hai. = Apanteles impurus Nees, circumscriptus Nees = Apan- teles bicolor Nees, conißerae Hai. = Apanteles conißerae (Hai.) , consularis Hai. = connexus Nees, contaminatiis Hai. = Apanteles conta7ninatus Hai., crataegi Ratz. = Apanteles glomeratus L. , dißßcilis var ß. Nees = Apanteles cajae Bouche, dilutus Ratz. = co7inexus Nees , diniidiatus Wesm. = russatus Hai. , dorsalis Nees (non Spin.) = Microjüitis mediator Hai., equestris Hai. = Ajmnteles ßalcatus Nees, exi- guus Hai. = Apanteles bicolor Nees, ßavilabris Ratz = Ap>anteles vitripennis (Curt.), ßulcriger Wesm. = Apanteles vitripennis (Curt.), ßuliginosus Ratz. = Apanteles se- riceus Nees, ßulvicornis Wesm. = Microjilitis mediator Hai., gastropachae Bouchö 23* 356 Arthropoda. = ? Apanteles rubripes Hai., globatus Bouche = yipanteles congestus Nees , glome- ratus Newm. (non auct.) = Apanteles caiae Bouclie, glomeratus Nees, Wesm. (non aut.) = Apanteles fulvip es (Hai.), gracilis Curt. = Apanteles gracilis Curt., hilaris Hai. = Apanteles emarginatus Nees, inimunis Hai. = Apanteles immunis (Hai.), infumatus Hai. = i'ugulosus 'iüees , ingratus Hai. = Microplitis ocellatae Boiiclie, insidens Ratz. = Apanteles difßcilis Nees, intricatus Hai. = Apanteles congestus l^Qes, lacteipentiis Hai. (non Ratz.) = Apanteles alhipennis Nees, lineipes Wesm. = Apan- teles lineipes (Wesm.), lineola Curt. = Apanteles lineola (Curt.), lividipes Wesm. = Apanteles hicolor Nees, hictuosus Hai. = tibialis Nees, majalis Wesm. = Apanteles callidus (Hai.) , marginellus Wesm. = posticus Nees, mediana Rutlie = Microplitis mediana Ruthe , melanoscelus Ratz. = Apanteles difßcilis Nees, meridianus Hai. = tibialis Nees, mossorius Hai. = tibialis l>iees , nemorum Hart., Ratz. = Apanteles fulvipes (Hai.), nigrinus Nees = tibialis Nees, ocellatae Boucbe = 3Iicroplitis ocel- latae Boucbe, ochrostigma Wesm. — Apanteles xanthostigma Hai. , opacus Ruthe = rngidosus Nees , parindus Ruthe = Microjditis spectabilis Hai. , perspicims Wesm. = Apanteles congestus Nees, perspicuus Nees (non auct.) = Apanteles caiae Bouche, j)lacidtcs Hai. = Apanteles placidtis Hai. , 2^'^P'^''^'^^^^ Hai. = Apanteles popularis (Hai.), praepotens Hai. = Apanteles sericeus Nees, praetextatus Hai. = Apanteles analis (Nees), pubescens Ratz. = calcatus Plal., reconditus Nees, Wesm. = Apante- les glomeratus L. , reconditus Hart, (uon aut.) = Apanteles Ordinarius Ratz., niß- labris Ratz. = ? Apanteles lateralis Hai., Spinolae Nees et aut. = 31icroplitis Sjii- nolae (Nees), Spinolae Hai. (non aut.) = crassicornis Ruthe, tcrebrator Ratz. = Apanteles lotigicaudis Wesm., virilis Nees et aut. = 3Iicroplitis tristis (Nees), tristis var. Nees, Wesm. = Microplitis spectabihs Hsd. , tuberculifera (Wesm.) = Micro- plitis tuberculifera (Wesm.), umbellataruni Hai. = Apanteles umbellatarxmi Hai., vestalis Hai. = Apanteles difßcilis Nees , viduus var. Rutlie = Microplitis vidua Ruthe, X antho^nis R\\t\iQ = Microplitis xa7itAopus Riithe ; Marshall. Microplitis dolens n. Q , Q^ Britannien p 232, borealis n. (J^ Schottland p 237; Marshall. Mirax rußlabris Hai. = spartii Hai. ; IVlarshall. Pambolus melanocephalus Marsh. — Dim(ris mira liutlie ; IVlarshall. Parajjterisßavipes M-Rgv. = Dimer is mira Unthe ; Marshall. Phanerotoma noctivaga n. ^ , (^f Insel Antigua ; Marshall p 112 Note. Psenobolus n. g. y^Os circulare, apertum. Caput subcubicum occipite immarginato. Abdomen petiolatum. Alae anticae cellulis cubitalibus tribus, nervo recurrente interstitiali vel cellulae cubitali primae apici inserto, cellulis discoidalibus aequi- longis , postice apice aperta , nervo parallelo non interstitiali« , mit pygmaeus n. 5,(3^ in Feigeufrüchten in St. Catharina (Brasilien) ; Reinhard p 246. Rhogas alternator Nees = geniculator Nees, anmdipes Schaff. = geniculator Nees, ater Curt. = bicolor (Spin.), halteatus Q\\rt.= geniculator Nees, compressor H.-Sch. = Petalodes unicolor Wcsm., nobilis Curt. = reticulator Nees, pictus H.-Sch. = cir- cumscriptus '^eea; Marshall — retictdafor l^ees var. atripes n. p 28, basalis n. Sardinien p 29; Costa — rußcornis H.-Sch. = dimidiatus Üinn. , sc/iatusn. H.-Sch. = villig er Wesm., signatus Nees = geniculator Nees, testaceus Hai. = circumscripttis Nees, zygaenae Nees = bicolor Spin. ; Marshali. Sigaljj/ms aciculatus Ratz. = ? lateripes Thoms. , ßdvipes Ratz. — pallidipes (Nees), rufescens Latr. = Phanerotoma dentata Panz.; Marshall. Spat/aus clavatus Nees et auct. = exarator (L.) ; Marshall. Triaspis caudatus Hai. (excl. var.) = SigalpJms cuudatus Nees, ßdvipes Curt., Hai. = Sigalp/ius pallidipes (Nees) , lepidus Hai. = Alludorus Irpidus (Hai.) , obscurellus Hai., Thoms. (non Nees) = Sigalp/ms ßoricola Wesm. ; Marshall. 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera. B. Faunistik und Systematik. 357 Familie Iclineumonidae. Bigneil (') verzeiclmet niclit in Lepiclopteren parasitirende Ichneumonen seiner Zuchten, nämlich : Hemiteles castcmetcs aus Trichiosoma betuleti^ Orihoj}clma luteo- lator aus Aulax hieracii an Hieracium umbellatum und Rhodites rosae ; Hemi- machus instabilis Forst, aus Cionns scrophulariae ; Limneria ciirvicauda Holmgr. aus Nematus gallicola an Salix viminalis; Euryproctus nigriceps Gr. aus Trichiosoma betuleti ; Mesolejus sanguinicollis G^v. aus Gallen an Salix caprea; Pim2)la brevi- cornis Gr. aus einer Käferpuppe. — Pezomachus minimus ist Parasit von Leucania unipunctata Haw. nach Howard (*). Xih^v Rhyssa vergl. Riley (•). Bridgman & Fitch behandeln die Ophioniden Britanniens in herkömmlicher Weise, ana- lytisch und biologisch. Mocsary (-) verzeichnet 204 sp. echter Ichneumoniden aus Ungarn ; tiberall ist die Synonymie und die genaue Verbreitung angegeben ; auch Wirthe werden öfters namhaft gemacht. Thomson bemerkt, daß Phyyadeuon sehr gleichförmige Arten , Hemiteles in Farbe und Sculptur des Metathorax sehr verschiedenerlei Modificationen aufweist ; bei letzterer Gattung kommen auch un- geflügelte und kurzgefltigelte Q. vor. Cryptus (ss. Graveuh.) ist nach ihm ver- muthlich artenreicher als Ichneumon. Vgl. Blro. Abzaria n. g. mit latipetiolaris n. Mexico p 201 Fig. ; Cameron (*). Amblyteles spilosomae n. Q aus Spilosoma menthastri, Ober-Ungarn p lOG, dinis n. 5 Mittel-Ungarn und Siebenbürgen p 119, moestus u. (^ Süd-Ungarn p 123; Mocsary (^) — mfus n. Q Catania; Destefani p ISß {^) — wipr-essus Thchh. = leth'ifer Mocs., puerperac Mocs. = Ichneumon puerperae Mocs. ; MoCSary ('■'). Apaelcticus sardous n, Q. , Kricchbaumeri u. (^ Sardinien; Costa p 22. Cryptus montezuma n. Mexico, monticola n. Mexico, nivalis w. Mexico p 203, ar- gentifrons n. (^ Mexico p 204, sodcdis n. Mexico p 204, solabilis n. Q. Panama p 206 Fig., unifasciatus n. Q. Panama p 206, hebetis n. Q. Panama p 208 Fig., fraternus n. Mexico p 208 , guatcmalensis n. Q. Guatemala p 200 ; Cameron (^) — himaculatus (jfX2LW . = Nyxeophilus bimaculatus [GxsiV .]; ThomSOn — clavatus Panz. = Spathius exarator (L.) ; Marshall — Coroebi Regimb. = Macrocryptns Coroebi (Regb.) ; ThomSOn — ßdginipennis u.^ Sardinien; Costa p 24 — fuscipennis Brülle = Joppidimn fuscipennc (Brülle); CamerOn ('). Hemiteles obliquus n. Q ,(^ Nord-Frankreich p 24, liambus n. Q Avignon p 25, mistralis n. Q ibid. p 26 , trochanteratus n. ^ ,(J* Phalempin p 26 , hirticeps n. ^ Pyrenäen p 27, balteatus n. Q , (;f Fortifp28, dispar w. ^ , (^ Libercourt p 28 , homocerus n. 5,cf ibid. p 29 , fuscicarpus n. Q ibid. p 29, liostylus n. P,(^ ibid. p 30, lissonotoides n. ^ Schweden p 30, rubrotinctus n. Q Avignon p 31, glyptonotiis n. ^ Frankreich p 32, numidicus n. Q. Algier p 32; Tfiomson — collinus Tx. Q Sardinien; Costa p 24. Holmgrenia Kriechb. non Forst. = Kriechbaumeria n. g.; Dalla Torre C-^) . Ichneumon castor n. Q. Costa Rica p 137, pollux n. Q Mexico p 138, costaricensis n. Costa Rica p 138 Fig., astarten. (J^ Guatemala p 139 Fig., semiobscurus n. Guatemala p 139, bilimeki u. (J^ Mexico p 140 Fig., chiriquensis n. (^ Panama p 140, bellatulus n. (j^ Mexico p 141 Fig., oppilattis n. Mexico p 142, pterelas n. 2 Mexico p 142, decemmacidatus n. (^ Panama p 143, argentipilosis n. 5,f^ Guatemala p 143, suffuUus n. (^ Panama p 144, phaedran. Guatemala p 146, sycophantus n. (^ Guatemala p 146 Fig., subfumatus n. Q, Guatemala p 146, lariceus n. Mexico p 147 Fig. , veraepacis n. Q Guatemala p 148, siärpinguis -a.. 5 Guatemala p 149, eros n. Guatemala p 149 Fig., carinifrons n. Q, Mexico, Panama p 150, celatus n. Mexico p 150 Fig., Forreri n. (J^ Mexico p 151 Fig., jalapensis n. Mexico p 152, tumidulus n. Mexico p 152 Fig., curtituberculatus n. 358 Arthropoda. Q Mexico p 153 Fig., mamlipleuralis n. Q Mexico p 153, pkiiyaspisn. Mexico p 154, imjmdicatus n. Q Mexico, coiisanguineus u. (^ Mexico p 155, Salvini u. Guatemala p 155 Fig., causticus n. (^ Guatemala p 156 Fig., godmani u. (^ Guatemala p 157 Fig., melanopoda n. Q Guatemala p 157, panamensis n. (^ Panama p 158 Fig., lymphatus n. Q Guatemala p 158 Fig., Championi n. 5 Guatemala p 159 Fig., munerosus n. (^ Mexico p 159 Fig., guatemalensis n, 2 Guatemala p 160 Fig., opiparus n. Q Mexico p 161 , teindus n. (^ Me- xico p 161, Sallaei n. (^ Mexico p 162, illacessitus n. Q Mexico p 163 Fig., iurpicuhcs u. (^ Mexico p 163 Fig., suhlutus vl. Mexico p 164, multipla- giatus u. Q Guatemala p 164, suffrageneus n. ^ Guatemala p 165 Fig., ojmiio- sus n. Q Mexico p 166 Fig., trunculentus n. Guatemala p 166 Fig., democraticus 11. Q Guatemala p 167 Fig., valladolidensis n. ^ Mexico p 167 Fig., suhsecivus n. (^ Guatemala p 168 Fig., yticatanensis n. Q Mexico p 168 Fig., centralis n. Q. Costa Rica p 173 Fig., parsimonius n. (^ Mexico p 174 Fig. , motivus n. Q, Mexico p 176 Fig., beatus n. Q. Mexico p 177 Fig., jnliventris u. (^ Guatemala p 179 Fig., notabilis n. (^ Guatemala p 180 Fig. , ariel n. (j^ Guatemala p 181 Fig., blandicus n. (^ Guatemala p 181 , oribazensis n. Q Mexico p 183 Fig., marginiscutellatus n. ^ Guatemala p 184, fortispina n. (^ Guatemala p 185 Fig., fastidiosissimus n. (J' Panama p 186; Cameron (^) — bellicosusn. Q Sicilien; Destefani (^) p 186 — breviventris Gvcss. = conicus Brülle; Camerotl (^) — ficarius Cavolini, Mayer = Philotrypesis caricae (Hass.) ; Mayr — lectus Cress. = Patroclus lectus (Cress.); Cameron (^) — Panzeri Jur. = Agathis malva- cearum Latr.; Marshall — toltecus Cress. = Patroclus toltecus (Cress.); Ca- meron '1^ Joppa chiriquensis u. Panama p 199, macuUcoUis n. Q Panama p 200, elegantula Smith = Irogns blandita Cress., maculosa Smith = Ichneumon maculosus (Smith), pulchripennis Smith = Trogtis ptdc/iripennis (Smith); CatUBrOn ('). Joppidiuni rußcolle n. Q. ,(^ Mexico, Guatemala p 210 Fig., coertdcipenne n. Q^cJ^ Panama p 210 Fig., yucatancnse Q. Mexico p 211 Fig.; Cameron (^). Ischnus Minai n. QncT Sicilien; Destefani (^) p 187 — ridibundus n. Q , (J' , pro- ximus n. Q Sardinien; Costa p 23. Kriechbaumeria n. g. (= Holmgrenia Kriechb. non Forst.); Dalla Torre ('^) p 52. Lissonota pectoralis n. (^ Sardinien; Costa p 26. Mesostetms pompili/ormis n. Q, Guatemala p 214, anniditarsus n. Q. Panama p 215 Fig., vividus n. Q. Guatemala p 216 Fig., chiriquensis n. ^ Panama p 228, la- mentarius n. Q, Panama p 219 Fig., brachygaster n. p 219, veraepacis n. Guate- mala p 220, fraternans u. Q, Mexico p 220, montezuma n. Mexico p 221, orna- ti/rons n. Q Mexico, Costa Rica p 221 Fig., striatifrons n. Q. British Honduras p 222, corpidentus n. Mexico p 223, nigrispina n. Q Mexico p 223, megapoda n. 5 Guatemala p 224 Fig., costaricensis n. ^ (= nicaraguensis n. Fig.) Costa Rica p 225, longipes n. Costa Rica p 225, euryaspis n. Mexico p 226, parvitubercula- tus n. Q Guatemala p 228; Cameron ('). Microcryptus ornaticeps w. Q Paris, nigritulus n. Q,0^Angre; ThomSOn p 23. Nyxeophilus n. g. mit Cryptus biniaculatus Grav. und N. nigricornis n. Q aus Süd- Frankreich ; Thomson p 18. Oedicephalus glucidatus n. Q. Guatemala; Cameron (^) p 188. Ophion adustus n. Schweiz; Haller p 200. Oronotus thoracicus n. Sardinien; Costa p 24. Phaeogenes montanus n. ^ Giacalone; Destefani (') p 187 — sesiae u. Q,(^aus Sesia asiliformis Rott. (cynipiformis Esp.) Ungarn; Mocsary (2) p 135. Phygadeuon ripicola n. Q,(^ Schweden p 19, parvicauda n. Q Marchicnnes p 20, varicornis n. ^j^J* Le Crotoy p 21, hetcrogaster n. 2 Fortif p 22 ; ThomSOn — 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera. li. Faunistik und Systematik. 359 semifumatus n. (^ Mexico p 212, alhicollisn. Q. Panama p 212, ulpinus n. Q Mexico p 213, melcmopoda n. Q Mexico p 214 Fig.; Cameron (*). Pwijüa cercojnthecus n. Q. ^ apricaria n. Q, cingulatella n. ^ Sardinien; Costa p 25 — Ragusae n. (^ Catauia ; Destefani (') p 188. Polycyrtus obtusis^nna u. Q Guatemala p 230 Fig., collinus n. Q. Guatemala p 231 Fig., confirmatus n. Guatemala p 232 Fig., cruciatus n. Q Mexico p 232 Fig., fulvofemoratus ^. ^ Guatemala p 233 Fig., montezimia u. (J' p 234 Fig., ca- naliculatus n. (J' Guatemala p 234 Fig., blanditus n. Guatemala p 235 Fig., c/io7i- talensis n. <^ Nicaragua p 236 Fig., guatemalensis u. (J' p 237 Fig., nigritibialis n. Panama p 238 Fig., fulvipcs n. (^ Guatemala p 238 Fig., pallidibaltcatus n. Q Mexico p 240 ; Cameron (') . Trogiis excellens n. (^ Guatemala p 190, ornaticornis n. Q^ Guatemala p 190 Fig.; Cameron (^]. Aculeata. Saunders p) wünscht Angaben resp. Exemplare über die für Britannien zweifel- haften Arten: Pompüus jicctinipes v. d.Lind., Andrcna angustior Kby. uud Boni- bus nivalis lyhlh . , s,oyi\e Sphecodesva'ien. Vgl. auch Saunders (^). Perkins ver- zeichnet viele Aculeaten aus Gloucestershire. Familie Formicidae. Langkavel republicirt folgende Beobachtung von Is. Bird: In Sungei-Udjong befand sich eine unterirdische Ameisenstadt mit 2 Eingängen; 18 Schritte davon sah Bird auf einem Baumstumpf größere röthliche Ameisen beschcäftigt, Stückchen einer zähen Ausschwitzung davon abzulösen ; Myriaden kleiner Ameisen sammel- ten diese uud schleppten sie , in gleichmäßig breiten Colonnen marschirend und von Offizieren begleitet , nach dem Bau , in den sie durch die obere Öffnung ein- traten , um ihn nach einer Weile durch die untere zu verlassen, und zwar in ge- ringerer Zahl : die zurückbleibenden brachten die Vorräthe unter. Bei Einbruch der Dunkelheit verließen die größeren Ameisen den Baumstumpf und marschirten nach dem unteren Eingang der Stadt , vor welchem sie eine ausziehende Abthei- lung von Lastträgern trafen ; letztere wurden in Unordnung gebracht , ordneten sich aber bald wieder und schlössen sich den anderen als Nachhut an. Nicht lange nachdem alle im Bau waren, erschienen 6 kleinere Ameisen mit einer grös- seren als Führer vor demselben, näherten sich einer todten Ameise, die dort lie- gen geblieben war, packten sie und verbargen sie in ca. 6 Fuß Entfernung unter einem Baumblatte. Blochmann beobachtete bei Camponotus liguiperdus , dann auch bei Formica fusca, F. sanguinca^ Lasius niger und L. umbratus, daß die Grün- dung des Nestes erfolgt, indem das Q. Eier legt, aus denen sich zunächst Arbeiter entwickeln, die vom Q. sorgfältig aufgezogen werden; daher findet man in jungen Colonien ^ mit Eiern, Larven, Puppen und Arbeitern. Auch Arbeiter mit weit entwickelten Eiern in den Ovarien , dann Eier aus unbefruchteten Q (weitere Entwickelung zufällig verhindert) wurden beobachtet. Fremde Puijpen wurden vom Q. nie geöffnet, so daß sie schließlich zu Grunde gingen [Camponotus mit Formica sanguinea) . Roth beschreibt die Lebensweise von Formica rufonigra Lowne, die Nester von Oecophylla virescms Fbr., welche Curculio angreift, dann die Züge von Ectatoma diminuta Smith und die Erndtegebräuche von Meranoplus dimidiatus üimth. Todd beobachtete, daß die Hügel von Poyonomyrmex occidcn- talis gewöhnlich von grobem Sand oder feinem Kiesel bedeckt sind , selbst wenn nur wenig Material davon vorhanden ist, vermuthlich weil dieses am meisten gegen Wind und Sonne schützt. Über und unter der Oberfläche arbeiten je zweierlei Ar- 360 Arthropoda. beiter : die einen bringen Theilchen von innen heraus und werfen dieselben auf den Vorplatz , die anderen nelimen dieselben und bringen sie auf den Wall. Die Art des Materials hängt vom Arbeiter ab ; auch zerbrochenes Glas auf dem Vorplatze wird zum Aufbau verwendet. Adlerz gibt nach der Literatur und nach eigenen Beobachtungen einen Überblick der biologischen Verhältnisse von Formi- coxenus nitidulus Nyl. (= laeviuscnla Forst.). Bos schildert ausführlich die Le- bensweise von Formica rufa. Vergl. RomanGS. Nach Will greift Atta cej)halotes am liebsten importirte Pflanzen an, so Orangen, Rosen und Gemüse. Doch ist sie sehr wählerisch und schickt Recognoscirungs- truppen aus. Neben dem Zähigkeitsgrade der Blätter ist auch deren Geschmack maßgebend ; so werden veredelte Triebe des Orangenbaumes angegriffen , wilde nicht. Die Zerstörung erfolgt sehr schnell, indem die herabfallenden Blattstücke einem Regen gleichen; Ameisenschwärme warten am Grunde. Formicideu Europas, s. Andre. Blochmann verzeichnet von Heidelbergs Um- gebung 20 sp. Fowler fand Tajmwma gracilescens bei Lincoln als Plage der Be- wohner, Familie Chrysididae. Vgl. Poujade, Riggio. Familie Ileterogyna. Radoszkowski (^j characterisirt und bildet ab die (j^ Begattuugsorgane der Mu- tilliden und nimmt Anlaß, nach ihrer Form neben Sphaerophthalma und Agama 3 n. g. aufzustellen. Mutilla saltensis wird als Parasit von Bombus insijndus Rad. aufgeführt. Vergl. Riggio. Agama Askhabadensis n. (J^, Kumarovü n. (^ p 39, casjnca n. q' Askhabad p 40, cau- cnsica n. (iJ'Caucasus p 37, Kohpeptica u. (^ Kokpet-Dag p 40 ; RadoSzkowski (■^j. Dasylabris n. g. mit Mutilla arenaria Fbr., niaiira lt., carinata Rad., Manderstiernii Rad., rubricans \jQ'^.j Sarafachani \lü,(\.., Olivieri llsiä., rabrosigiiaia Rsid., cretiata Rad., decorala Rad., ornata Rad., lugubris Fbr., concolor Rad., italica Fbr., (jodcfredi Rad. p 28, Mloko.sea-itdi n. (^ Daghestan, sejugis n. § Askhabad und Pichpek p 47 ; Radoszkowski (2). Edrionotus n. g. mit Mutilla littoralis Pet., obliterata Smith, capitata hnc . , bitubercu- lata Smith, cornuta Oliv., calcarivcntris Rad., distitwta Lep. ; RadOSZkOWSki C-^) p 33. Mutilla arenaria Fbr. = viaiira Fbr. var., barbara L. = brutia Petg. ; Kohl (") — caffra n. (^ Caflraria p 20, Daghestanica n. (^ Süd-Europa, Caucasus p 24, eloii- gata n. (J' Caucasus, Persien, p 17, etiropaea va.r. = salteiisis n., //gmalaje?isis n. (j^ Himalaja p 13, leygiuica u. (J', Q Daghestan p 16, luzonica n. Luzon p 27, riihrocincta var. ß, y. = Daghestanica n., saltensis n. Q. Caucasus p 8, serta n. Orenburg p 46, trunconumalica n. (^ Trunconomalicu p 26; Radoszkowskl ('^) . Psammotherma Etzchmiadzini \i.Q.FAzm\ViCi'm\] RadOSZkOWSkJ (-) p 45. Pseudunmtilla n. g. »fcmina (aptera) thorace in medio valde constricto, regiouibus tribus uti in maribus mutillarum distiuctis constituto« mit «wY/m/e?;«*« n. Sardinien; Costa p 17, 18. Sapyga rnßpes Costa = similis Fbr. ; Kohl ("') p 161. Tricholahiodes n. g. mit Mutilla pechinculaia Klg. und asiuticus n. (^ Asien ; RadoSZ- kowski (2) p 36. 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera. B. Faunitstik und Systematik. 361 Familie Fossores. Kohl (^) erkennt nur 4 Spheciden-Genera an : 1) Felopoeus mit subg. Podium Ltr. und Trigonojysis Perty, 2) Ammophila mit Culoptera Lep., Misciis Jur., 3) Para- pscmwiop/iilaTaschb . und Psam7nop/ii'laDah.\h . als subg. Paeudospkex Tasebb. und 4) Sphex mit 6 Gruppen, nämlich : Chlormi = Dryiniis = Pnmaeiis ; Sphex occitaniciis- Gruppe ; Par asphex = Enodia = rt75?sec^?/5- Gruppe ; Harpactopus = Gastrosjyhaeria = Prwnonyx = s?cf Transkaukasien, Tschemachli p 165; Morawitz (^j. Microdynenis alastoroidcs n. ^ Transkaukasien, Borshom p 179, hißdusw. Q , (j^ Taurien, Balaklawa p 178; Morawitz (^j . Pterochilus aberrans vl. Q. Transkaukasien, Adshikent p 145, atro/nrlus n. 5'Cf Griechenland, Syra p 142, Eckloni u. (^ Ordoß (China) p 139, hellenicus n. Q Griechenland, Syra, Rhodus p 138, punctiventris n. Q Nord-Persien, Scharud P 143 ; Morawitz ('). Rhynchium Rothi n. Q. , (^ Australien ; Kirby (^) p 324. Familie Apidae. Radoszkowski (') beschreibt und bildet ab die Begattuugswerkzeuge der Phile- remideu im Nachtrage zu seiner systematischen Arbeit v. J. 1872. Darnach kann man 3 Gruppen unterscheiden : A. die Zange zeigt nur die Aste, die Basis fehlt; hierher: Ep eoloides G'ir. mit ambigiius Gir. Hnd., Faidia Rad. mit abdomi- nalis Ev. (= hirsutulics Ev.) und melectoides Rad. (= scripta Gerst.) und Dioxys Lep. mit py renal ca Lep.; B. die Zange besteht aus den Ästen und der Basis; die hamuli sind vorne zurückgekrümmt; hierher: Ammohatoides Schck. mit bicolor Lep. {= punciaius Jur.) und Ammobates Latr. mit carinatus Mor., setosus Mor. und rußventris Latr.; C. die Zange besteht aus den Ästen und der Basis, erstere sind dünn und cylindrisch , letztere stark ; die hamuli sind plump ; hierher Biastes Panz. mit Schottii Fbr., punctatus Schck. (= nasutus Gerst.) und truncatus Nyl. [= jmnctatus Gerst.) und Pasites Latr. mit mactilatus Jur. — Philercmus Lep., bisher von Ammobates nur durch die Kiefertaster verschieden , bietet auch im Baue des Q Epipygium generische Verschiedenheit dar, dessen Ende bei ersterer Gattung zwischen den Gabelästen mit stäbchenartigen Vorsprüugeu besetzt ist, welche bei letzterer fehlen. Grimm beobachtete, daß Ameisen {Formica rufa) und Erdhummeln {Bomhis terrestris) sich wegen eindringenden Wassers flüchteten und einander unterstützten; letztere gruben sogar einen Ablaufsgraben für das Wasser von 34 cm Länge und 2-3 cm Tiefe. Der erste Impuls zur Arbeit ge- schah durch einen »Trompeter«. Favre spricht sich bezüglich der Entstehung des Geschlechtes bei den llymenopteren neuerdings gegen Dzierzon's Theorie aus und zieht für seine Ansichten namentlich Osmia und Anthopkora heran. Biologie 8. Hexapoda. IX. Hymenoptera. B. Faunistik und Systematik. 365 von Chalicodoma mwaria, Megachile centuncularis und Osmia hicornis, vei'gi. Bellevoye p 113. Hoffer (^) erhielt ein Nest von Bonibus terrestris aus Tirol, in welcliem unter 29 ^ , 36 ^ und 1 (^ sich fanden: Normalfärbung von ^ und Q (kein (^) in Mehrzahl, dann -B. autumnalis ¥hv . , \2ir. ferrugineus Schmkn., B. cryptanmi Fbr., B. dissectus Gyll., eine neue Form var. soroensioides'Q.oE. und B. lucorum L., sowie noch andere unbeuannte Formen, im Ganzen 10 für Q und 3 für ^, unter denen eine sogar an B. viduus Er. erinnerte, ein neuer Be- weis, daß man diese Arten nicht in Museen, sondern im Freien studiren muß. Hoffer (^) beschreibt das Nest von Bomhis alticola Kriechb. und pomorum Panz. var. mesomelas Gerst. sehr ausführlich. Künckel beschrieb Nester einzeln leben- der Bienen; ebenso Dalla Torre (^) . Dalla Torre (') beobachtete, daß Bombus Gerstaecheri Mor. im Q, Geschlechte am gelbblumigen Aconitum Lycoctonum (ranunculifollum) , in der (^ und Arbeiterform am blaublumigen Aconitum Na- pellus Pollen sammelt, und bezeichnet diese sexuelle Sammeldifferenzirung als Ileterotrophie. Sie wird durch die RüsscUänge und späte Entwicklungszeit resp. Kürze der Sammelzeit erklärt. Hoffer (') beschreibt das merkwürdige Verhalten von Aphonia Colonella L. im Hummelstaate. — Perkins beschreibt von Sphecodes ferruginatus Schck. 2, von Halicttis villosulusKby. 1 Abweichung im Fliigelgeäder. — Hoffer (^) zählt 14 Insecten, darunter 7 Hummeln und 10 Hymenopteren auf, welche Solanum Dulcamara besuchen, und schildert deren Thätigkeit und Verhalten; Polygala Chamaebuxus wird von 10 Hummeln besucht. Schmiedeknecht bringt die analytische Bestimmuugstabelle von Osmia Q und (J' zu Ende und beschreibt in ausführlicher Weise 23 sp. dieses gen. Saiinders (^) kennt nun aus Britannien 15 Sp/tecodesavten : gibhis L., reticidatus Thoms., subquadratus Jur., spini/losus Hgs., pimcticeps Thoms,., longtilus Hgs., niger HgS., jyj7«'/>o«s Thoms., similisy^Q^m., ftrruginatus^Q,\xGk., hgalinatNS 8(ihc\i.., variegatus HgS., divist/s Hgs., ditmdiatus Hgs. Und afßnis Hgs. Enock fand bei Woking Andrena nigrocunea und Nomada altentafa am 30. December in Sand- röhren lebend auf. Holmberg "verzeichnet aus Tandil 11 Bienenarten: Ajns melli- fica L. et aut., Bombus thoracicus Sich, und violucens Lep., Xylocopa ciliata Burm. und splendidida Lep. und 5 n. sp. FriOSe vergleicht Andrena apicata Sm. und Clarkella \s\)j.] bei ersterer schmarotzt: Nomada borealis Zeit., lateralis P&nz.^ Bombylius major L., Pollenia vespillo Fbr., P. rndis Fbr., Gonia fasciata Meig., divisa Meig., trifaria Zell. Arnold gibt weitläufige Beschreibungen von Andrena compta Ev. und Epeolus luctuosus Ev. — Vgl, Poujade, Perez, Destefani (^), Riggio, Hoffer (^), Birö, Saunders (^j, Stainton, Romanos. Von Melitta curiosa Mor. Q. = Andrena curiosa Q. Mor. wird das (J' neu beschrieben ; Morawitz [^) p ISl. Andrena Orenbiirgensis Schmiedekn. = compta Ev. ; Arnold. AntJddium melanostomum n. Q , peregrirmm n. ^ Sardinien ; Costa p 2 I . Bomhns terrestris var. soroensioidcs n. ^ Tirol; Hoffor ('^j p 87. Ceratinn riipestris n. Q Tandil; Holmborg p 130 Fig. Cilissa nigra n. ^ Sieders (Wallis;; Friese p 85. Erplectica n. g. mit titlnnans n. $,0^ Tandil, Tinta ; Holmberg p 125 Fig. Hylams plumicornis n. 0^, strigulosns n. Sardinien; Costa p 10. Megachile Sckmirdehwc/iti n. Q. ■, (^ Sardinien; Costa p 21. Melimiptila n. g. p l 19 mit tandilcnsis n. Q , (J* Tandil, Tinta p 120 Fig. ; Holm- berg. Nomada parvida n, (^ Sta. Ninfa ; Dostefani (^) p 189. Osmia [C/ialcosmia] latere/asciata n. Q, [Ctmosmia) hi/iatnata n. (J' Sardinien ; Costa p 20 — maritima n. (= ? idgriventris Zett.) § ' Cf Rostock; FrlOSe p 87 — 366 Artliropoda. attgtistula Zett. = uncinata Gerst., hidens Perez = SolskyiM.ow^ chrysomelina Panz. = fuciformis Latr., inermis Nyl. Thoms. Zett.? = vuJpecula Gerst., /«^/ceps Thoms. = uncinata Gerst., tmistell'ma Gerst. = emarginata Lep., nigriventris Gir. et aut. = corticalis Gerst., parietina Smith = ? vtdpecitla Gerst., parietina Gurt. = ? angustula Zett., truncatula Tlioras. = Solsl^yi M-Or., xanthomelaena Gerst. et aiict. = püicornis Smith, xanthomelaena Nyl. (nou auct.) = corticalis Gerst., xanthomelaena aut. (excl. Nyl.) = fucifonnis hsitv . ■, Schmiedeknecht. Stelis Frey-Gessne7-i n. 5 ' cf "^^^ Anthidiuin ßavilahre Lep., Sieders (Wallis); Friese p 83. Svastra n g. mit bomlilans n. ^ , (^ Fig. Tandil p 129 und detecta n. Fig. (^ Buenos Ayres; Holmberg p 131. Xylocopa Forbesii Khy . Q = coronata Smith; Ritsema. Apis mellifica L. Honigbiene. Bienenstaat. Curley (S ^) stellt bezüglich der gesellig lebenden Insecten fol- gende Sätze auf : »Ich setze eine Urbiene voraus, fruchtbar, emsig, sammelnd und intelligent. Ich zeige, daß großer Mangel die Zahl ihrer Eier vermindern muß ; daß einige Eier unvollkommen sein werden durch die Veränderung der mütterlichen Organe, daß infolge dessen einige von den Nachkommen fehlerhafte Reproductions- organe haben werden ; daß, während andere unvollkommene Bienen gewöhnlich vor ihrer Reife sterben werden, die nur in den Geschlechtsorganen unvollkommenen leben werden, wenn die vollkommenen Abkömmlinge leben ; daß einige von diesen wegen ihrer Paarungsuufähigkeit nicht ausfliegen, sondern mit der Mutterbiene bleiben werden ; daß, da sie Überfluß an Energie haben, sie dieselbe zufolge des Instincts ihrer Rasse zum Sammeln und Aufspeichern von Futter gebrauchen werden; daß das überflüssige Futter von der Mutterbiene benutzt und daß daher die Familie zahlreich werden wird, daß dadurch auch die früher angestrengte Mutter ihre Gesundheit wieder erlangen und daher vollkommene Nachkommen hervor- bringen wird, daß infolge dessen diese Ammen-Bienen keine Nachfolger haben werden und die Familie daher wieder Mangel leiden wird, daß einige Bienen der- selben Brut mit den Ammen angeboren unvollkommen sind, trotzdem aber ihre Mutter verlassen und Genossen finden werden, daß die Nachkommen angeboren unvollkommener Bienen sehr variabel sein werden, daß einige dieser Nachkommen unfjlhig sein werden, sich zu vermehren, und daß sie daher mit den Mutterbienen als Helferinnen zusammenbleiben ; daß diese Helferinnen von den angeborenen UnvoUkommenheiten ihrer Mutter her Naclifolger haben werden, wie es thatsäch- lich bei den Honigbienen und Hummeln beobachtet wird; daß die Variation, so hervorgebraclit , möglicher Weise auf eine bestimmte Urform oder be- stimmte Urformen zurückgeführt werden kann durch das Überleben der Besten ; daß, was immer für Umstände beitragen mögen, das in Frage stehende Resultat hervorzubringen, es an und für sich schon genug ist, den Grund für die Specificirnng der Bienen und Ameisen in Weibchen, Männchen und Arbeiter an- zugeben, (f Parthenogenesis. Ulivi (^ ^j hält daran fest, daß auch bei der Honigbiene keine Parthenogenesis existirt. Hierher auch Leriche. Zellenbau. Bott schildert den Entwicklungsgang der Entstehung der Bienen- zellen nach MüUenhoft' und Reclam. Stachel. Die Doppelrolle des Bienenstachels s. Anonym. Faulbrut. Cheshire & Watson beobachteten, daß die Faulbrut durch den Bacillus alvei n. hervorgerufen wird. Anatomie. Leuckart. 8. Hexapoda. X. Hemiptera. XI. Mallophaga. 367 Biologie. Czwalina. Bienenzucht. Bessler gibt eine Geschiclite der Bienenziiclit namentlich in culturhistorischer Beziehung. Vergl. auch Pollmanri; Huber, Cowatl. C. Paläontologie. Scudder liefert eine Bearbeitung des bisher über fossile Hymenopteren Be- kannten. X. Hemiptera und XI. Mallophaga. (Referenten: Dr. Franz Low und Paul Löwin Wien.) Über Anatomie etc. vergl. die Referate auf p 152, über allgemeine Insectenkunde am Schlüsse der Abtheilung. *Altum, Bern., Über Woll- und Schildläuse, in: Zeit. f. Forst- u. Jagdwesen. 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Jahrg. p 353— 365, 369—375. [396] , 2. Fhijtomyza anntdipes Meigen als Gallenbildnerin, ibid. p 344 — 345. [396] Keller, C, 1. [Über den CAermes unserer Fichte ( C/ten>je5 fm(Z«s et cocc««e? vomitorian - Maden nachtheilig , der der Eier nicht ; die Versuchseier in einer Büchse, einer Flasche aus farblosem und einer aus blauem Glase entließen gleich- zeitig am 8. und 9. August die Maden, welche, mit Truthahnleber gespeist, in der Büchse sich am 22. und 23. Aug., in der farblosen Flasche vom 29. Aug. bis 5. September verpuppten, in der blauen Flasche kleiner blieben, nur halb so schwer als die anderen wurden und sich nicht verpuppten, in der Büchse am 17. Sept., in der farblosen Flasche erst am 21. Sept. die Imagines ergaben. Eine phytophage Varietät nahm Suppe von indischem Mehl. B. Faunistik und Systematik. L Allgemeine Fannistik. Nach Röder (') hat die Fauna von Portorico vieles mit der von Cuba gemein; ihr eigen ist Toxorrhina (2 sp.) sonst nur in Nord- America lebend, fossil im Ostseebernstein ; sein Verzeichnis ist das erste, die Angabe »Antillen« der älteren Autoren ungenügend. 2. Pannen. Meeresfauna: An Fluthlacheu bei Marblehead, Mass., Nov. 30 Coelopa fri- gida Fall., die Hagen [^) den marinen Insecten zuzählen möchte; Entwicklung unbekannt. Vergl. ferner Meade. Paläarctische Region. England, Insel Man: Cordylurina Meade; Schottland: Microdonina Cameron, Cecidomyina LOW (^] . — Wellingholthausen : Sickmann {^) zählt auf Stratiomyidae 11, Tabanidae 5, Bombyliidae 2, Empidae 1, Asilidae l, Therevidae 1, Doli- chopodidae 1, Gymnosomina 1, Tachinina 8, Dexinal, Sarcophagina 2, Mus- Zool. Jahresbericht. 1885. II. 27 18 Arthropoda. cina 8, Anthomyina 5, Scatophagina 2, Dryomyzina 1, Tetanocerina 1, Sapro- myzinal, Trypetinal, Psilina 1, Cliloropina 1 , Syrphidae 37, Conopidae 4, Hip- poboscina 5, Brauliiia 1 . — Frankreich : Anthomyiua Bigot ('''), Cecidomyidae Mik (2], Syrphidae Mik ('^) : Normandie : Cecidomyidae, Trypetina Gadeau. — Thürin- gen: Tachinina, Phasina Girschner, Harz- Mycetopliilidae Beling, Dolichopodi- dae Förster. — Mark Brandenburg : Phytomyzina Karsch (^j — Preußen: Tachinina Brischke. — Österreich: Anthomyina Bigot ("^), Cecidomyidae LOW (^ 3), Mik •}, ^), Wacht!, Ortalina Mik (''), Hernstein (Nieder-Österreich) : Mik (1) verzeichnet Cecidomyidae 2, Mycetophilidae 13, Simulidae 1, Bibionidae 2, Chironomidae 1, Tipulidae (Limnobiidae) 2, Stratiomyidae 1, Tabanidae 12, Leptidae 4, Asilidae 9, Bombyliidae 7, Therevidae 5, Scenopinidae 1, Empidae 25, Dolichopodidae 14, Lonchopteridae 2, Phoridae 3, Syrphidae 78, Sepsina 2, Chloropina 2, Ephydrina 1, Helomyzina 2, Borborina 4, Scatophagina 3, Opo- myzina 1, Drosophilina 1, Psilina 4, Trypetina 10, Sapromyzina 3, Lonchaeiua 1, Ortalina 2, Agromyzina 3, Cordylurina 4, Anthomyina 19, Muscina 11, Sarcophagina 5, Tachinina 7, Oestridae 2, Hippoboscina 1; Piesting-Thal : Cecidomyidae Mik ('); Klein-Zell bei Hainfeld: Mik (') zählt auf 248 sp. ; Tirol: Cecidomyidae LOW (•^), Mik 1^) ; Schweiz: Syrphidae Haller, Tachinina Brischke; Galizien: Mycetophilidae Grzegorzek (', ^), Dziedzicki; Steiermark, Kärnten, Kroatien, Istrien : Cecidomyidae LOW •'); Polen, Gouv. Minsk, Warschau etc. Dziedzicki; Böhmen: Syrphidae Kowarz (^j, Mycetophilidae MikC^); Mähren: Cecidomyidae Mik i^), Wachtl, Banat: Syrphidae Mik (•^j . - — Italien: Cecidomyi- dae Hagen (^j, Tachinina Brischke; Insel S. Peter; Syrphidae, Muscina Carlini. — Spanien : Anthomyina Bigot [^^) — Sardinien : Mj'cetophilidae, Ephydrina, Tachinina, Gymnosomina, Phasina Syrphidae Costa. — Ostsee-Provinzen: *Sintenis. Rußland: Mycetophilidae Dziedzicki; Süd-Rußland: Therevidae Röder (^), Mont Caucase : Syrphidae Bigot ('^ , Tjau-Schan-Thäler: Sarcopsyllidae Schimkewitsch. — Japan : Laphrina Röder (-) Stratiomyina, Sargina Wulp (*) . — China: Tabanina, Pangoniina Wulp ('); Himalaya: Bombyliidae Wulp {'). — Algerien : Clitellarina, Asilina, Bombyliidae, Syrphidae, Trypetina, Muscina Engel f^), Hippoboscina Bigot {^'^) ■■, Marocco : Anthomyina BIgot {^^)] Nubien (Khartum): Anthomyina Bigot {^^). — Madeira: Tipulina Wulp (*]. Äthiopische Region. West-Africa. Goldküste: Tabanidae Wulp ('), Ogow^: Tabanidae Wulp (^), St. George d'Elmira: Tabanidae Wulp(^), Conde: Ortalina Wulp ['^). — Südwest- Africa: Chimfimo : Tabanina, Pangonina Wulp (M- — Süd-Africa: Tabanina Wulp ('), Leptidae Bigot (7). — Cap der guten Hoflnung: Syrphidae Bigot (^^), Anthomyina Bigot (^"i, Hippoboscina, Nycteribina Bigot (^'^). — Port Natal: Anthomyina Bigot {^^). — Zanzibar: Bombyliidae, Laphrina Röder (^). — Mada- gascar: Dasypogonina Karsch [^), Hippoboscina Bigot ('2). Austral-asiatische Region. Indien: Syrphidae Bigot ('^). — Ostindien: Hippoboscina Bigot (^^). — Phi- lippinen: Nach Jordana y Morera Tipulidae 14. Bibionidae l, Mycetophilidae l, Culicidae3, Chironomidae 2, Stratiomyidae 12, Tabanidae 5, Leptidae 4, Asilidae 29, Bombyliidae 5, Therevidae 2, Empidae 2, Dolichopodidae 6, Syrphidae 24, Pipunculidae 1, Muscidae 83, Phoridae I, Pnpipara 2. — Java: Tipulina Wulp (^ '^), Limnophilina, Anisomerina, Rhyphidae, Statiomyina, Sargina, Xylophagi- dae, Tabanina, Bombyliidae Wulp ('), Ortalina Wulp (^j . — Sumatra: Tipu- lina, Sargina, Tabanina, Bombyliidae Wulp (^). — Borneo: Sargina, Tabanina 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faimistik und Systematik. 419 Wulp ('). — Molukken: Anthomyina Bigot {^^\ — Aroe, Batjan, Gebeh : Or- talhia Wulp (^); Halmahera: Tipulina Wulp (^^ , Ortalina Wulp ('); Gorontalo: Tipiilina, Sarghia WuIp (^j; Obi: Wulp ('), Ortalina Wulp {■''). — Morotai : Ti- pulina, Hermetiina Wulp ('), Ortalina Wulp (•'; — Sunda-Inseln : Bombyliidae Wulp ('). — Poeloe-Gamoe : Bombyliidae Wulp (^j. — Batavia: Tipulina Wulp (2). — Tibet: Stratiomyina Wulp (^). — Ternate: Stratiomyina Wulp(^;, Autlio- myiua Bigot('"). — Ooclünchina : Syrpliina Blgot('^'). — Ceylon: Dexina Bigot('), Anthomyina Blgot (^^), Hippoboscina Bigot ('^K — Neu-HoUand : Therevidae Röder (^). — Australien: Dexina Bigot(^), Ocypterina Bigot ("), Anthomyina Bigot (*'^), Muscina Bigot [^^), Syrphidae Bigot ('■'). — Süd- Australien • Ade- laide: Bombyliidae Wulp (*) . — Neu-Caledonien : Ortalina Wulp (•'), Syrphidae Bigot C'^), Nycteribina, Hippoboscina Bigot C^). Anthomyina Bigot ('"), Dexina Bigot (■*). — Neu-Seeland: Nycteribina Bigot ('"^J. — Waigioe, Audai, Salawatti: Ortalina Wulp (3). Neotropische Region. Westindien: Cuba : Anthomyina Bigot (i") ; Portorico: Röder (^) verzeichnet Culicidae 7, in., Mycetophilidae 2, Tipulina 1, Limnobiina 2, Antochina 1, Auisomerina 1 n., Hermetiina 1, Paugoniina 1, Bombyliidae 8, Asilina 4, Lepto- gastriua 1, Therevidae 1, Dolichopodidae 9, In., Syrphidae 22, 1 n., Cono- pidae 2, Phasina 2, 1 n., Gymnosomina 1, Ocypterina 2 n., Tachinina 7, 2 n., Dexina 1, Sarcophagina 4, Muscina 7, xVnthomyina 4, Tetanocerina 1, Tanj''- pezina 4, 2 n., Ulidina 4, Richardiina l, Trypetina 4, Sapromyziua 5, Sciomy- zina (Synon.), Sepsina 1, Ephydrina 1 ; Haiti: Hippoboscina Bigot (''^). — Bra- silien: Dexina Bigot ('*), Hippoboscina Bigot ('^j; San Jäo del Rey: Asilina Engel ('); Porto Allegre : Hippoboscina Bigot i^^); St. Catharina: Cecidomyidae Müller. — Argentinische Republik: Buenos Ayres : Tachinina, Ocypterina Bigot (''), Anthomyina Bigot(^"). — Chili: Tachinina Bigotf^J, Ortalina Bigotl**), Anthomyina Bigot [^^). — Colombien : Hippoboscina BigotC^]; Bogota: Stratio- myina Wulp f^). — Surinam: Tipulina, Tabaniua Wulp (^1. — Panama: Hippo- boscina Bigot C^). - Guatemala: Hippobosciua Bigot (^'^). — Mexico: Dexina Bigot (^), Platystomina Bigot [^] , Phasina Bigot (■'), Nycteribina Bigot ('^j, Syr- phidae Bigot (13), Anthomyina Bigot ('**;, Asilina, Tanypezina Brauer. Nearctische Region. Mt. Washington; Beridina Willistotl (^). — Californien : Pangouina Williston (^), Dexina Bigot i^), Anthomyina Bigot ("^), Hippoboscina Bigot (^^j. — Balti- more: Anthomyina Bigot ('")• — Florida: Pangonina : Willistotl (^). — White Mountains: Leptidae Williston {^). — Washington, Montagnes Rocheuses : An- thomyina Bigot (^j . — Nord- America : Dasypogonina, Laphrina, Asilina Willi- ston ('), Syrphidae Williston ('), Tabanina, Pangonina, Leptidae Williston (■*), Stratiomyidae, Xylophagidae Williston (^), Conopidae Williston (-). 3. Systematik der Ordnung. Nach Brauer zerfallen die Dipteren nach den Imagines in Orthorrhapha mit l. Eucephala ^Culicidae), 2. Cecidomyidae, 3. Tipulidae s. 1., 4. Orthorrhapha brachycera, 5. ? Acroptera und in Cyclorrhapha a. Aschiza mit 6. Syrphidae, 7. Pipunculidae. S. Platypezidae, 0. Phoridae (Ilypocera) und b. Schizophora mit 10. Eumyidae und 11. Pupipara; nach den Larven s. oben p 417. Die Dip- tera Orthorrhapha gingen den Cyclorrhapha voraus (concentrirtes Nervensystem 27* 420 Arthropoda. dieser). Bigot ('^) theilt die Fliegen in 2 Tribus: Omalocerati mit den Ma- croceratae und Brachyceratae und Auomalocerati (= Pupipara Brauer), die Bracliyceratae zerlegt er wieder in Empodiata mit 3-4 Pulvillen und Anem- podiata mit höchstens 2. Nach Williston (^j wird die Abgrenzung der Familien Stratiomyidae , Xylo- phagidae, Acanthomeridae und Leptidae durch synthetische Typen : Arthropeas Low, Glutops Burgess, n. gen. O.-S. (= Arthropeas leptis O.-S.) sowie Subula Mg. erschwert. Nach Brauer wird bei orthorraphen Brachycereu die Discoidal- zelle meist hinten von einer Coucavader begrenzt, bei wenigen (u. a. Scenopinus, Dolichopusj von einer convexen,. dagegen bei allen Cyclorraphen immer von der convexen 5. Längsader und nie von einer Concavader. Wulp (^) behandelt 62 sp.: Tipulidae 17, 12 n., 1 u. g., Rhyphidae 1 n., Stratiomyidae 20, 8 n., 1 u. g., Xylophagidae 1, Tabanidae 14, S n., Bombylii- dae 9, 5 n. mit zahlreichen Synonymen ; WuIp (-) Culicidae 2, Tipulidae 6, Rhyphidae 1 Figg. JVJik (-^J handelt über Syrphidae 2, 1 var. n., Asilidae 2, Tachinina 2, Mycetophilidae 1, Tipulidae 1 und über Cecidomyideularven ; iViik (^) über Phasiua und Bombyliidae. Bigot !') verwahrt sich gegen Williston's Behauptung, es seien 2/3 tler von ihm als neu beschriebenen sp. schon beschrie- ben gewesen. 4. Systematik and Faunistik der Familien. A. Orthorraplia. Familie Cecidomyidae. Hagen (2, *) liefert Material zur Kenntnis des Auftretens der Hessenfliege. Die Angaben Costas über Cecidomyia tritici in Italien (Neapel und Brindisi) vom Jahre l&Sü beziehen sich darnach auf CVc. destruclor. Vergl. ferner Haase [^), Hierony- mus, Inchbald (S^ ^1, Gadeau, Mik (S ^ '\ ^], Low (^ '^), Riley, Thomas [\ 2, -j, Ziegele, Landois, R. Schneider. Mik (') verzeichnet von Hernstein Campylmryza 1, Catocha 1 und gibt Figur \om ¥\Vi^Q\ A&V Cnmpylomyza pallipes Zqü. LOW (') beschreibt Cecidomyia Persi- cariae L. ^ ,(;^ n., Larve, Puppe, Galle, fand serotiva Winn. auf Hypericum hir- sutum L., euphorbiae H. Lw. auf Euphorbia virgata W. &K. (Puppen in Cocons), Salicis Sehr, auf Salix arbuscula L., yalUB.. Lw. auf Galium anisophyllum Vill., pusillum L. und boreale L., asperulae F. Lw. auf Asperuia cynanchica L,, hieracii F. Lw. auf Hieracium flexuosum W. & K., margincmtorquensWmu. auf Salix in- cana Schrk., terminalis H.Lw. auf Salix hastata L., rosarum Hardy auf Rosa pim- pinellifolia L., laxi Inch. auch in Bayern, Beckiana Mik in Nieder -Österreich, Diplosis helianthenii Hardy auf Helianthemum grandiflorum Scop. in Tirol., D. anthophthora F. Lw. auf Verbascum austriacum Schott nee Orientale M, & B., Lasioptera carophila F. Lw. auf Trinia vulgaris DC und Siler trilobum Crantz, zog Asp/iondylia ononidis F. Lw. aus Gallen an Nebenblättern und deformirten Fruchtknoten, A. verlad Vall. aus Verbascum austriacum Schott nee Orientale M. & B., Hormomyia Poae Bosc auch von Nieder-Österreich, den Alpen und Bosnien. Campylomyza flavipes Schin. nee Meig. = pallipes Zett.; Mik (^). Cecidomyia Beckiana n. (J', Q Nieder-Österreich, Frankreich in deformirten Blät- tern, Stengeln und Knospen mit Haarflocken auf luula Conyza DC; Mik (2) p 140 Fig. — potentillae n. (^, ^ Znaim (Mähren) und Wittekind im Frühjahr ge- sellig aus deformirten Blüthenknospen der Potentilla argentea L. p. 193 Fig., trachelÜM. Q Aggsbach an der Donau (Nieder-Österreich) im Juni aus zwiebel- 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 421 ähnlichen Knospengallen an Campanula rotundifolia L. p 195 Fig., campanulae A. Müller (Galle) = trachelii n. (Insect) ; Wachtl — ericina n. Q Österreich, Steiermark , Croatien , Triest aus artischokenförmigen Blatterschöpfen auf Erica carnea L. und ? mediterranea L. p IS4 Fig., phjteumaüs n. Q Nieder- Österreich aus einer deformirten Blumenkrone von Phyteuma orbiculare L. oder Ph. spica- tum L. p 487 Fig., hypogaea n. (^ Raxalpe 5000 Fuß Seehöhe aus unterirdi- schen zu 3-4 an der Grenze des unter- und oberirdischen Stengeltheiles befind- lichen Gallen von Chrysanthemum atratum Jacq. p 4 88; LOW (') — oleaen. cr,$ Fiurae (Croatien), Volosca (Istrien) aus beiderseits fleischig vorragenden Blattgallen von Olea europaea L. p 109, alpina n. cS^Q- Nieder-Österreich (Al- pen), Steiermark (6000 Fuß Seehöhe), Tirol, Kärnten (7000 Fuß), Schottland, gesellig aus deformirten Triebspitzen der nicht blühenden Stämmchen von Silene acaulis L.; LOW (3). Diplosis mediterranea n. rf,2 i*^ ganzen europäischen Mittelmeergebiete aus defor- mirten Triebspitzon von Erica arborea L. ; LOW (^) p 485 Fig. — coryligallarum n., oleisugan.; Targioni-Tozzetti. Lasioptera Hieronymi Weyenb. zu Asphondylia; LOW (■^). Familie Mycetophilidae. Mik (') verzeichnet von Hernstein Sciara 2, Mycetophila 3 [xanthotricha und adumbrata Mik ausführlich beschrieben mit Flügelfigur) , Phronia 1. Brachycampta 1, Allodia 1, Rhymosia 3, Sciophila l, Bolitophila 1, neu für Ober- und Nieder- Österreich Rhymosia cristata Stäg., für Nieder-Österreich Rh. affinis Wiun., de- ren Provenienz bisher unbekannt gewesen. Mik ('') berichtigt Grzegorzek's An- gabe der Provenienz von Sciara Kowarzii, die nicht von West-Galizien, sondern von Asch in Böhmen stammt. Von Sardinien nach Costa Sciara morio Fbr. Jor- dana y Morera verzeichnet von den Philippinen Sciara sp., Röder von Portorico Sciara 2. — Grzegorzek (') liefert (p 49-79) eine Bestimmungstabelle von 239 Sciarasii'ten und als orientirende Beigabe zu seineu früheren Beschreibungen (p 193-19S) eine »Reihenfolge der Sciarasivten in der analytischen Tabelle mit Angabe der Beschreibung«, sowie einen »alphabetischen Ausweis der SciaraaiYten mit der Zahl der Reihenfolge in der analytischen Tabelle«. Grzegorzek (^) be- schreibt aus Galizien 7 n., 2 n. g. Dziedzicki beschreibt 26 n. sp., 2 n. g. als Fortsetzung seiner Untersuchungen über die Mycetophilen (cfr. Bericht f. 1884 II p 429); er untersucht und bildet ab die Hypopygia von Boleiina trivittataMg . , hasalis Mg., sciarina Stäg., dispar Winn., Sciophila apicalis Winn., ornata Mg., tuniida Winn., nigricornis Zett., trilineata Zett., lucorum Winn., cinerascens Zett., fasciata Fries, occultans Winn., hyalinata Mg., flavicollis Zett., incisurata Zett., exigua Winn., punctata Mg., affinis Stäg. Mik (^) besitzt ein Analogon der Girschnerschen Museide in einer an den Tho- raxseiten Microlepidopteren-Schuppen tragenden Macrocera. Apolephthisa n. von Empalia und Tetragoneura durch längere Hülfsader ohne Rand- feldquerader und eine Cubitalzelle verschieden p 205, rara n. West-Galizien p 206 Fig. ; Grzegorzek (^). Boletina nitida w. Q. Galizien; Grzegorzek ['^) p 204 — Winnertzii n. (J^, nigro- fuscau. (j^ Weiß-Rußland p 170 Figg., dispecta n. (j^ Gouv. Mohilew p 171 Fig., gripha n. (^ Kujavien (Polen), silvatica n. (^ Weiß-Rußland p 172 Figg., Grze- gorzeckü n. (^ Kopaliny (Galizien) p 173 Fig., nigricans n. (^ iWeiß- Rußland P 174 Fig.; Dziedzicki. Eurycera n. Boletina im Habitus ähnlich, aber Antennen breit, vorgestreckt, 2 4-14- gliederig, kürzer als Kopf + Thorax, Geißelglieder stark zusammengedrückt, IY2 422 Arthropoda. mal breiter als lang, vena mediastinalis mit der costalis in der halben Länge die- ser vereinigt; v. posticalis vor der transversa media gegabelt; v. analis doppelt. Abdomen Tringelig. Hypopygium in das Abdomen einziehbar. YouGlaphyroptera durch die über das Ende der vena cubitalis verlängerte v. radialis, von Anaclinia durch unähnlichen Habitus , die Flügeladerung und anders gestaltetes Hypopy- gium unterschieden, flava n. (^f , ^ Weiß -Rußland und Gouvernement Minsk p 167 Figg.; Dziedzicki. Hertwigia n. von Paratinia durch folgendes unterschieden : Palpen cylindrisch, ■jgliederig, die 2 ersten Glieder kurz, das 3. 1 '/2mal läni^er als das 2., das A. zwei mal länger als das 3., Mittel- und Hinterschienen bedornt; von Tetragoneura : Vena posticalis vor demUutereude der vena transversa media gegabelt, v. cubitalis bogenförmig ; von allen Sciophiliuen : die vena mediastinalis vereinigt sich mit der V. radialis ungefähr in der halben Länge dieser, weit hinter der oberen Ga- belzinke der dritten Längsader, marginata n. (^Weiß-Rußland p 165 Figg.; Dziedzicki. Parastemma n. von Anatella verschieden durch die 3 in einer Querlinie auf der Stirn stehenden Ocellen , rimdliche Flügelbasis, Fehlen der Afterader und die Stellung der mittleren Querader hinter der Mitte der Unterrandader, ambigua n. (^ Gali- zien im Juli p 199 Figg.; Grzegorzek ('-). Paratinia difficilis n. (;;f Weiß-Rußland ; Dziedzicki p 169 Figg. Platyura simjüex n. (J', Q p 201 Figg., lucusa n. (^ p 202, decora n. (J' p 203 Galizieu; Grzegorzek (^j. Polylepta flava u. $ Galizien ; Grzegorzek (2) p 204. Rymosia = Rhymosia n.; Mik (*). Sciara dispar n. (^,Q. Seesen am Harz ; Beling (^ Sciophila WrzemioiosUi n. (^ p 175 Figg., parva n. (j^ p 176 Figg., nitida n. (^ Weiß-Rußland p 177 Figg., penicillata n. (^f Galizien p 178 Figg., brunnea n. Qp Umgegend von Warschau p 179 Figg., Radoszkoivskii n. (^ Weiß-Rußland, levis n. (^ Galizien p ISO Figg., trivittata n. (f Bochnia (Galizien) p 181 Figg., marginata n. (^ Gouv. Mohilew und Minsk p 182 Figg., bicolor n. (J' Weiß- Rußland p 183 Figg., egregian. (^ Galizien p 184 Figg., luridan. (J^ Weiß- Rußland p 185 Figg., Winnertzii n. (^ patria? p 186 Figg., pidchellau. (^ Weiß-Rußland p 187 Figg., fulva n. (f Gouv. Minsk und Mohilew p 188 Figg., Wankotviczii n. (^ Galizien p 189 Figg., /asciataVfinn. = Winnertzii n., niacu- lata n. in expl. tabul. indescr.; Dziedzicki. Familie Simuliidae. Von Hernstein Simulia 1 ; Mik ('). Cfr. Hagen (^), Tömösväry, Trybom. Familie Bibionidae. Von Hernstein Bibio 1, Penthetria 1 ; nach Mik (')• Von den Philippinen P/ma fidvicollis Fbr. (Figg.); nach Jordana y Morera. Familie Chironomidae. Von Hernstein Dianiesa BranicMi Nowicki , neu für Nieder-Osterreich (Figg.) nach Mik ('). Von den Philippinen Chironomus 1, Tanypus 1; Jordana y Mo- rera. Cfr. ferner * Jaworowski, A. Sciinelder, Trybom. Chironomus Grimmii n. Q ; A. Schneider. 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 423 Familie Culicidae. Nach Röder (^) ist weder aus de Geers, noch Walkers, noch Lehmann's Be- schreibung zu ersehen , daß Tipula [Corethrai cuUciformis De Geer ein Mochlonyx sei. Wulp ("■^) liefert Abbildungen zu Anopheles barbirostris und annularis Wulp (1884). R. Schneider fand in den Erzgruben von Klausthal im Oberharz eine Culexart, bleich und durchsichtig, C. pipiens h., nnv in den höher gelegenen Strecken, besonders dem Neunzehn- und Dreizehnachterstollen. Cfr. Imhof, Try- bom. Hatten behandelt die Mosquitopest auf Borneo. Von den Philippinen Cu- lex sp., Megarrhina 1, Corethra 1 nach Jordana y Morera; von Portorico Culex 2 [fasciatus Fbr. = mosquito R. D.) , Anopheles 3 [albimanus Wied.), Corethra punctipennis Say nach Röder (*). Megarrhina Portoricensis u. (^ Portorico; Röder (^) p 337. Mochlonyx cuUciformis Mein. = sehr ? Tipula cuUciformis De G. = ? M. veluHnus (Ruthe) Lw. var.; Röder (^j. Tipula [Corethra) cuUciformis De G. vielleicht kein Mochlonyx ] Röder (^). Familie Tipulidae. Von Curland und Livland nach Sintenis 80 sp. bekannt. Von den Philippinen nach Jordana y Morera Dicranomyia 1, Libnotes 3, Mongoma 1, Eriocera 2, Ti- pula 1, Pachyrrhina 2, Ctenophora 3, Scamboneura 1. Unterfamilie Antochina (Limnobiina anomala). Nach Mik (^) stammt Orimargula alpigena Mik von Lunz, nicht Linz ; von Por- torico Toxorrhina fragilis Lw. nach Röder (^). Unterfamilie Limnobiina. Von Hernstein nach Mik (') Pedicia 1 ; von Dorpat Pedicia rivosa nach SJntenis. Von Portorico nach Röder (^) Limnohia I , Geranomyia [Aporosa] rufescens Lw. cf (n.). Cfr. Simony. Limnohia substituta Wlk. zu Poecilostola \ Wulp (*) = Conosia tVrorato Wied. ; id. (^j . Poecilostola pallens n. (^ Java; Wulp (^) p 13 , (2) p 86 Figg. Unterfamilie Anisomerina. Wulp (^) beschreibt das (^ seiner Eriocera albipuncfata (1884) und ergänzt die Beschreibung von Eriocera Hilpa (Wlk.) und acrostacta (Wied.) (Java). Cylindrotoma acrostacta Macq. zu Eriocera \ Wulp (')• Eriocera ferruginosa n. ^ Java; Wulp (^) p 13 — trifasciata n. Q Portorico; Rö- der (1) p 338. Limnohia acrostacta Wied. zu Eriocera] Wulp (^). Oligoneurajavensis Dol. = Eriocera acrostacta (Wied.); Wulp (')• Pteroscopus Hilpa Wlk. zu Eriocera; Wulp (*). Unterfamilie Eriopterina. Chionea araneoides Dalm. auch in Nord-Ungarn nach BirO [^). 424 Arthropoda. Unterfamilie T i p u 1 i n a. Von Hernstein nach Mik (') Tipula 1 ; von Portorico nach Röder ('- Tipula longipemiis Macq. Wulp (^j vermerkt Tipula umbrina Wied. von Sumatra, Goron- talo und Obi, Wulp (^^) Megistoeera fuscana Wied. Figg. von Java, Halmahera und Batavia. Ctenophora cmnulosa n, Q Java; Wulp (*) p 1 — melanura Wlk. kritische Art, hat 2 Typen, vielleicht beide SargusaxiQn\ Wulp (^) . Pachyrhina maderensis n. (;;f Madera, nigro-annulata n. (J', Q Morotai p 8, qua- drivittata n. (J' p 9, triplasia n. (J*, ^ Java (Ambarawa) p lü; Wulp ('). Prionota n. von Ctenophora (^ und ^ durch stark knotige oder gesägte, beim <^ nicht verästelte Antennen verschieden p l, nigriceps n. (J^, Q Java; Wulp (^) p 2, (2) p 82 Figg. Tipula serrula n. (J*, Q Sumatra, pilosula n. (^f Java (Ambarawa); Wulp (') p 5 — leucupgga n. cf, Q Java (Ambarawa); Wulp (') p 6, (2) p 8 1 Figg. — ifenms n. 9 Surinam; Wulp (') p 7, i^j p 85 Figg. — culiciformis Deg. = sehr ? Moc/iloni/x culici/ormis Mein. ; Röder (■^) [Culicidae]. Familie Rhyphidae. Rhyphus macidipennis n. (J* Ardjoeno, Java; Wulp (^) p 14, (2) p 87 Figg. Familie Stratiomyidae (Notacantha). Sickmann p) verzeichnet von Wellingholthausen : Nemotelus 1, Oxycera 2, Stratiomys 2, Üdontomyia 2, Sargus 1, Chrysomyia l, jBen's 1, Microchrysa 1 ; Jordana y Morera von den Philippinen: Chrysomyia 1, Üdontomyia 2, Nemo- telus 1, Phyllophora 1, Rosapha 1, Negritomyia 1, Acanthina 1, Sargus sp,, Plecticus sp., Ptilocera l, Musama 1. Williston (•^) liefert eine Tabelle der in Nord- America vertretenen Unterfamilien Beridina 4 gen.. In., Sargina 6 gen., Stratiomyina 3 gen., Clitellarina 4 gen., Pachygastrina 3 gen. und Herme- tiina 1 gen. Unterfamilie Pachygastrina. Williston (^) gibt eine Tabelle der in Nord-America vertretenen gen. Packy- gaster Gerst., Chauna Lw. und Acanthina Wied. Chauna Lw. umzuändern, weil vergeben; Williston (^). Phyllophora bispinosa Thoms. = Tinda hulica (Wlk.); Wulp (^j Tinda modiferaY^Wi. = indica (Wlk.); Wulp (^). Unterfamilie Clitellarina. Williston (■^) gibt eine Tabelle der nordamericanischen gen. Nemotelus Geoff.^ Oxycera Mg., Euparyphus Gerst. und Clitellaria Mg. Von Algier Lasiopa calva Mg. nach Engel (2), von Hernstein Lasiopa 1 nach Mik ('). Clitellaria bivittata Wd., tenebrosa Wlk. = Negritomyia bilineata Fbr. ; Wulp (•). Cyclogaster Macq. = Lasiopa Brülle ; Mik (^J. Unterfamilie Stratiomyina. Williston [^) gibt eine Tabelle der nordamericanischen gen. Stratiomyia Geoff., 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 425 Myxosargus Brauer, Odontomyia Mg. Wulp ['^] bespricht Negritoniijia bilineata (Fbr.) (Java) und Odontomyia viridana (Wied.) vou Tibet. Caenacantha d. Flügel länger als der Hinterleib, Discoidalzelle vorn mit dem Ptero- stigma zusammenhängend und drei Längsadern zum Rande entsendend p 58, bipartita n. Q. Bogota p 59 Figg. ; Wulp (^). Ephippium angustum Mcq., spim'genmi Do\. = Negrltomyia bilineata (Fbr.); Wulp (^). Evasa pallipes Big. = scenopinoides Wlk. ; Wulp (^) . Exochostoma caloceps Big. = ? zu Odontomyia\ WilMstOn (^) . Nerua Wlk. = Evasa Wlk. ; Wulp ('). Odontomyia mutica n. (J* Ternate ; Wulp (') p 62. Rhaphiocera spinithorax Wlk. = Negritomyia bilineata (Fbr.); Wulp (') • Stratiomyia japonica n (;^, Q J a^an, ßavoscutellata n. (^ Java; Wulp (^) p 60. Unterfamilie Sargina. Williston (•^) gibt eine Tabelle der nordamericanischen gen. Macrosargus Big., Sargus Fbr., Ptecticus Lw., Chrysouottis Lw., Chloromyia Dune, und Microchrysa Lw. Wulp (^) bespricht Ptecticus illucens Schin. von Japan, latifascia (Wlk.) und brevipennis (Rnd.) (^ von Java, Sargus nietallinus Fbr. und mactans Wlk. Chrysonotus hw . umzuändern, weil vergeben ; Williston (^). Ptecticus apicalis n (^ Sumatra, Borneo ; Wulp (') p 62. Sargus laetus n. (^ Sumatra p 66, pubescens n. Q Gorontalo p 67, fvrmicaeformis Dol. = metallimis Fbr. nee mactans Wlk., brevipennis Rond. und latifascia Wlk. zu Ptecticus\ Wulp (') — viridis Say keine Chloromyia, nigribarbis Big. = viridis Say, trivittatus Say? zu Ptecticus, xanthopiis Wd. = decorus Say; WilMston (^). Cfr. Unterfamilie Tipulina. Unterfamilie Hermetiina. Von Portorico nach Röder (') Hcrmetia illucens L. Wulp [^) bespricht H. bat- janensis Wulp und Eudmeta marginata Fbr. Hermetia armuta n. Q Morotai p 68, cerioides O.-S. = batjanensis Wulp, marginata Fbr. zu Eudmeta; Wulp i^). Tüxocera limbiventris Mcq. = Etidmeta marginata Fbr. ; Wulp (^). Unterfamilie Beridina. Williston (■^) gibt eine Tabelle der nordamericanischen gen. BerisUv., Allo- gnosta O.-S., Neoexaireta O.-S. und 1 n. Scoliopelta n. von Beris durch breites kurzes Abdomen, verlängerte Taster, die 3. »posterior vein«, von Actina durch holoptisches (^f verschieden, lufeipes u. (J* am Fuße des Mt. Washington; Williston (^) p 154. Familie Coenomyidae (Chiromyzidae) . Cfr. Xylophagidae. Familie Xylophagidae. Williston (•^) gibt eine Bestimmungstabelle der in Nord-America vertretenen gen. Coenomyia htr., R/iac/iicerus Rsd., Xylophagus Mg.; Wulp (') bespricht Ä<- 426 Arthropoda. biila inamoena Wlk. von Java ; Brauer gibt Figg. von Heterostomus ciirvipalpis Big. (Chile) . Cfr. Familie Therevidae. StibiilaMg. umzuändern, weil vergeben ; Williston (^). Familie Tabanidae. Von Hernstein nach Mik (') Haemafopota 1, Therioplectes 4, Tabanus 7; von Wellingholthausen nach Sickmann (^j Tabanus 3, Hatmatopota 1, Chrysops 1; von den Philippinen nach Jordana y Morera Haemafopota sp., Chrysops 1, labanus 2, Diabasis 1. WMIiston (^) gibt eine Bestimmungstabelle der in Nord-America ver- tretenen gen. Pangonia l, Apatoksies n. , iStlvins, Chrysops (Pangonina), Haemato- pota, Lepidoselaga, Diachlorus, Therioplectes, Atylotus, Tabanus. ünterfamilie Tabanina. Wulp (') bespricht Tabanus immanis Wd., rubidus Wd., striatus Fbr., minimus Wulp, basalis Mcq. Tabatms multipunctatus n. Q Chimfimo, Südwest- Africa p 73 Figg., leucaspis n. Q Goldküste, West-Africa p 74 Figg., atripesn. Q Ogowö, West-Africa p 75 Figg., bipitnctatus n. Q St. George d'Elmina (West-Africa), Süd-Africa p 7 5, equestris n. (;;f , 5 J^^^j Sumatra, Borneo p 77 Figg., Felderi n. q^, Q Ningpo (China) p 78 Figg., dorsilinea Wd. = striatus Fbr. ; Wulp (*). Unterfamilie Pangoniina. Wulp (') bespricht Diachlorus diversipes Mcq. von Surinam ; von Portorico nach RÖder (') Chrysops costatus Fbr. Apatolestes n. von Pangonia Q durch breite, mit breitem nacktem Callus geschmückte Stirn und den Besitz von Ocellen verschieden p 11, comastes n. Q California (ähnlich Tabaiius pumilus Mcq.) \ Williston ('*). Chrysops striatus n. Q Amoy (China) p 7 9, dimidiatus n. Q. Chimfimo (Südwest- Africa) p SO ; Wulp (i) N. g., 6 mm lang, innominat., Florida; Williston (^) p 12. Familie Leptidae. Von Hernstein nach Mik (^) Symphoromyia 2, Leptis 2, von den Philippinen nach Jordana y Morera Atherix l, Chrysopih 3. Williston ("*) gibt eine Bestimmungs- tabelle der in Nord-America vertretenen gen. Triptotricha, Leptis, Chrysopila, Spania, Ptiolina, Symphoromyia, Atherix. Nach Röder bei Williston [^) ist Hilari- morpha singularis Egg. von Mik in Aigen bei Salzburg gefangen, »nach Gesichts- bau und Verhalten im Leben doch vielleicht Leptide«. Nach Williston (^) haben alle Leptiden 5 Hinterrandszellen, nur Hilarimorpha Schin. hat 4, Leptis und Atherix haben als neue Merkmale stets 2 Sporen am Ende der Hinterschienen, Chrysopila und Symphoromyia nur 1 . Nach Bigot C') gehört auch Lampromyia hier- her, da eine n. sp. [vergl. unten] ein Empodium besitzt. Lampromyia argentata n. (^ Africa australis ; Bigot (^) . N. g. innominat., mit 4 Hinterrandszellen und an die Discoidalzelle stoßender vierter, White Mountains ; Williston '^). 8, Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 427 Familie Mydai da e. Brauer gibt Abbildung des Mydas nibidapex Wd. von Mexico (Cnernavaca) ; Triclonus ist wegen seiner Taster von den tasterlosen Mydaiden zu trennen. Cfr. Abschnitt Mimicry. Familie Apiocer idae. Sie sind nach Brauer Thcreva und Xestomyza zunächst verwandt durch Rtissel- bildmig und zarte Beine und werden als synthetische Ausgangsformen für die Asi- liden, Mydaiden und Thereviden aufgefaßt, den Asiliden wohl zumeist verwandt, jedoch nicht zu ihnen gehörig. Nach Coquillett gehört Ajriocera nicht zu den Asi- liden (Osten- Sacken), sondern zu den Thereviden; diese unterscheiden sich mit Apiocera von den Asiliden wesentlich nur durch die in zwei fleischige Lippen endende Proboscis; er hcält alle 22 Stücke Apiocera seiner Sammlung aus Califor- nien für wahrscheinliche Variationen einer sehr variablen Species (? A. haruspvx O.-S.). Familie Therevidae. Cfr. Brauer, Coquillett. Röder C) stellt mit Schiner Agapophijtus Guer. hierher und nicht zu den Xylophagidae, er beschreibt A. Ai/siraliae Guer. Figg. Von Hernstein nach Mlk (') Diah/neitra 2, Ihereva \'>, von Wellingholthausen nach Sickmann ('^) Thcreva nobilituta Fbr., von den Philippinen nach Jordana y Morera Thereva 2, von Portorico nach Röder (*) Thereva argentata Bell. Agwpophytm alhopunclatus n. 9 Neu-Holland ; Röder (^) p 139 Figg. Cyclotelus Wlk. nicht = Agapophytiis Guer., sucius Wlk. nicht = Agapophytus Austra- lasiae Guer. ; Röder C) . Phycus tristis (H. Low i. litt.) n. cf Sarepta (Süd-Rußland) p 140; Röder (')• Familie AsiHdae. Cfr. Abschnitt Mimicry. Von Hernstein nach Mik (') Leptarthrus brevirostris Mg., Cyrtopogon 4, Andrenosoma 1, Laphria 3; von Wellingholthausen nach Sick- mann (■-) Asilus a(ricopiUus Fall. ; von den Philippinen nach Jordana y IVIorera Tjeptogaster 2, Damalis 4, Damalina 2, Slichopogon 1, Laphria 8, Maira 1, Omma- tiiis 2, Emphysomera 1, Fromachus 5, lianms 1, Erax 1; von Portorico nach Röder (M Erax 2 [rufitibia Mcq. mit berichtigender Beschreibung, femoratus Mcq., Be- schreibung des (^) , Proctucanthus rußvcntris Mcq., Ommatius maryinellus F., Lep- togaster cubensis Big. mit berichtigender Beschreibung. Unterfamilie Leptogasterina. Gonypes cubensis Big. zu Leptogaster\ RÖdor ('). Unterfamilie Uasypogonina. Röder ^) gibt eine verbesserte Diagnose von Dasypoyon japimicus Bigot (^, ^ . Nach Mik (•^) entstand Holopogon nigripennis Mcq. Q^ aus einem Topfe mit Mehl- würmern ; Brauer gibt Abbildung von Scylaticus ßdvicomis Phil, von Chile. Aphamarfaniafur n. Nord-America ; Wllliston (^) p 53. Cyrtopogon montanum Big. nee. montamis H. Lw. = cuhninum n. ; Bigot (■^) p 90 — - 428 Arthropoda. ocullferum Big. nicht = Meyer-Burü Mik ; Bigot (^) — = Meijer-Durii Mik ; id. (2) p 90. _ Eupalanms alpestns Jänn. = Cyrtopogon longiharhus H. Low; Mik (^). Microstylum Hildebrandti n. (j^ Central-Madagascar ; Karsch (^) . Unterfamilie L a p hr i na. Nach Röder ('') ist das Vaterland der DasylUs nigripennis (Wied.) Africa (Zanzibar) . Laphria rufaw. Japan; Röder (^) — nigripennis Wied. zu DasylUs ; id. (•») — centralis n., rußcaudan. p 55, chalybea n. Nord- America p 56 ; Williston('). Unterfamilie Asilina. Von Algier nach Engel (2) Dysmachns spiniger Zell. Engel (') gibt ein Ver- zeichnis der 12 bekannten Emphysonierasirten und eine vergleichende Characte- ristik dieses Genus. Asilus Mydas n. Mexico ; Brauer p 387 Figg. Emphysomera pulchra n. (^ , § San Joao del Rey (Brasilien); Engel (^) p 146. Erax tagax n. p 65, jid)atus n. p 66, latrunculus n., furax n. p 67, stamineus n., similis n. p 68, leucocomus n. p 69, varipes n. p 71 Nord- America ; Williston ('). Mallophora nigra n. p 58, Guildiana n. Nord-America p 60; Williston (^) . Proctacanthus rufus n. Nord-America; WlllJston (') p 74. Promachus princeps n. p 62, albifacies n. Nord-America p 63 ; Williston (^) . Familie Bombyliidae. Von Hernstein nach Mik (M Hemipenthes morio L. (hat verlängerte Pulvillen), Exoprosopa 1, Bomhylius 4, Ploas 1; von Wellingholthausen nach Sickmann (2) Anthrax fenestr ata Y\\., Bombylius major h.; von Algier nach Engel ('^) Anthrax velutina Mg., Argyramoeba trifasciata Mg., Chalcochiton holosericeus Fbr., Lomatia Sabaea F., Amictus strigilatus Lw.; von den Philippinen nach Jordana y Morera Anthrax 1, Argyramoeba 2, Exoprosopa 2 ; von Portorico nach Röder (') Anthrax lucifer F., bigradata Lw., Gorgon F., paradoxa Jänn., faunus F., Oedijms F. [Argyramoeba], Exoprosopa Cerberus F., cubana Lw. Nach Röder ('') stammt ^xo/jroso/;rt nox (Wlk.) von Africa (Zanzibar). Vergl. ferner Osten-Sacken (2), Poujade, Stein und Mik (^). Anastoechus longirostris n. Q Himalaja; Wulp (^) p 85. Anthrax nox Wlk. zu Exoprosopa\ Röder ['') — doryca Boisd. zu Exoprosopa, hya- ^ma Wd., ^Mcens Wlk. = Troglody ta Fhr. (Java, Sumatra), argyropyga Bol., tri- punctata Wulp = distigma Wied. zu Argyramoeba; Wlllp (^). Argyramoeba melania n. (? (J') Java; Wulp (') p 84 Figg. Bombylius pulchellus Wulp zu Comastes; Wulp (^). Epibates Quedenfeldti n. (J*, Q zwischen Blidah und Medeah (Mauretanien) Juni bis August; Engel i^) p 178 Figg. Exoprosopa cingulata n. ^ Adelaide p 82, ^Mc^omWMcq. = [Anthrax] (/oryea Boisd.; Wulp (1). Neuria indecora n. (J' Poeloe Gamoe ; Wulp (') p 85. Systoechus leucopygus n. «^ Adelaide; Wulp (^) p 86. 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 429 Familie Scenopinidae. Von Hernstein nach Mik (^) Scenopinus fenestralis L. Familie Empidae. Von Hernstein nacli Mik (^) Cyrtoma 1 , Rhamphomyia 3 (neu für Österreich fuligiiiella TiQÜ. und Loeivi Now.), Enipis 1 (neu für Österreich helophila Lw.), Hilara 3, Philohitra 3 [Bohemanni Zett., hygrobia Lw. und J'allaciosa Lw. neu für Nieder-Österreich), Wiedemannia rhynchops 'i^ovf. (neu für Nieder-Österreich), Hemer odromia 2, Tachydromia [Platypalpus] 3, Tachista 2 ; zuerst ausführlich beschrieben sind Tachydromia nigricoxa und eumelae7ia Mik (1884) Figg., Empis anfractuosa Mik (1884) Figg. Von Welliugholthausen nach Sickmann (^) Empis livida L. Von den Philippinen nach Jordana y Morera Elaphropeza 1, Hybos 1. Über Hilarimorpha vergl. Familie Leptidae. Dysaletria melanocephala Boh. i. litt. = atriceps Boh., Zett.; Röder (^) . Empis variegata Mg. nicht - m,aculata Schiu., sondern eigene Art; Mik (') . Familie Dolichopodidae. Mik (1) verzeichnet von Hernstein (Nieder-Österreich) Psilopus 1, Neurigona 1, Gymnopternus 1, Hercostomus 2, Dolichopus 2, Oncopygius 1, Medeterus 1, Hydrophorus 1 , Campsienemus 1 , Sympycnus 1 , Teuchophorus 1 , ^anthochlorus 1 ; Sickmann ('^) von Wellingholthausen Poecilobothrus nobilitaius L . , Röder bei För- ster fSyntormon sulcipes Mg. vom Harz, und FÖrstGr gibt Beschreibung des Q von Aachen. Von Portorico nach Röder (') Psilopus pilosus hw . (Q beschrieben), ch-ysoprasius Lw., suavium Wlk., psittacinus Lw.^ jucundus Lw.^ dimidiatus Lw., diffusus Wd., Chrysotus pallipes Lw., von den Philippinen nach Jordana y Morera Psilopus 3, Diaphorus 3. Oncopygius ornatus Mik = [Hypophyllus) distans Lw.; Mik ('). Pelastoneurus fasciatus n. ^ , (J' Portorico ; Röder (^) p 341. Porphyrops sulcipes Lw. zu Syntormon] FÖrstcr. Rhaphium sulcipes Mg. zu Syntormon, nicht Porphyrops ; FÖrster. Syntormon oedicnemus Lw. = [Rhaphium] sulcipes Mg.; Förster. Familie Lonchopteridae (Acroptera). Von Hernstein nach Mik (') Lonchoptera 2. Familie Phoridae. Von Hernstein nach Mik (^) Trineura 1, Leptophora 1, Phora 1 ; von den Philippinen nach Jordana y Morera PAora sp. Vergl. ferner Haase (•)■ B. Cyclorrhapha. Familie Syrphidae. Kowarz (^) verzeichnet von Böhmen Baccha 2, Sphegina 2, Ascia 3, Xantho- gramma 2, Melithreptus 3, Pelecocera 1, Didea 3, Catabombal, Syrphus 33 (1 u.), Melanostoma 8, Platychirus 9, Pyrophaena 2, Chilosia 25 (1 n.j, Lmcozona 1, 430 Arthropoda. Eriozona 1, Brachyopa 2, Rhingia 1, Volucella 4, Sericomyia 2, Arctophila 1, Eristalis 11, Myiathropa 1, Helophilus 2, Eurymyia \, Maliota \, Merodon 2, Tropidia 1 , Sjnlomyia 1 , Temnostonia 3 , ^ylota 1 0 , Syritta 1 , Brachypalpus 1 , CnorrÄm« Mcq., Pocota 1, Eumerus 1 , Chrysochlaniys 2, Ort/ioneura 2, Chryso- gaster 8, Pipizella 1, Hering ia 2, Pijnza 9, Cnemodon \, Peniiim 1, Paragus 3, C/irysotoxum 10, Psarus 1, Microdon 2, Cen« 1. Mik (') von Hernstein (Nieder- Österreicli) Baccha 1, Sphegina 1, 'Kanthogranmia l, Melithreptus 3 (als nen für Nieder-Österreich ili". dubii/s Zett.), Pelecorera 1, Syrphus 13, Melanostola 2, Platychirus 2, Spathiogaster 1, Chilosia 19, Brachyopa 1, Rhingia 2, Volucella 4, Sericomyia 1, Arctophila 2, Eristalis 5, Myathropa 1, Helophilus 3, Liops 1, Eurynxyia 2, Tropidia 1, Xylota 2, Syritta 1, Brachypaljms 1, Criorrhina 1, Myiolepta 1, Pijnza 1, Chrysotoxuni 2, Microdon 2. Mik (^) von Wien und aus Süd-Tirol Doros conopseus F., aus dem Banat Doros destillatorius Mik ((J' be- schrieben); Sickmann ('-) von Wellingholthauseu Chrysotoxum 3, Pijnzai, Chryso- gaster 3, Chilosia 3, Syrphtcs ß, Rhingia 2, Volucella 2, Sericomyia 1, Eristalis 4, Criorrhina 1, Spilomyia 1, Helophilus 1, Xylota 1, Melithreptus 3, Syritta l, Arctophila 1 , Pyrophaena 1 , Leucozona 1 , Helophilus 1 . Costa von Sardinien Volucella zonaria Poda [bifasciata Scop), Merodon 2 n., Eumerus argyreus Lw. (ca;i7i)jesRnd.) und 1 n. Carlini von der Insel St. Peter Paragus hicolor F. BirÖ f-l von Ungarn (oriental. Carpathen) Syrphus topiarius Mg. Cameron von West- Schottland Microdon mtitabilis. Haller als neu für die Schweiz Spilomyia vespi- formis L. (Juli auf der Höhe des Striclchofes am Zürichberge auf blühenden Stauden von Spiraea filipendula) . Von Algier nach Engel ("-j Chrysotoxum inter- medium Mg. Von den Philippinen nach Jordana y Morera Syrphus 3, Sphaero- phoria 1, Baccha 3, Ascia i, Eristalis G, Helophilus 2, Graptomyza 4, Milesia 4. Von Portorico nach Röder ^') Volucella 4, Eristalis 3 ^berichtigte Beschreibung von albifrons Wied., j^msjo Wied. (J' beschrieben), Pteroptila 2, Xylota 1, Baccha 3, Ocyptamus 3 (1 n.), Mesograpta 5 (darunter minuta Wied. (j^, ^ beschrieben, laciniosa Lw. var.). Kowarz ('■^j gibt scharfe Unterscheidungsmerkmale von Baccha obscuripennis Mg. (J* und elongata F., Sphegina clunipes Fll. und Zf/^ers;;ef//'i Schin., Ascia po- dagrica F., ßoralis Mg, und f^is/»ar Mg., eine analytische Tabelle von Jfe/i- threptus dispar Lw., pictzis Mg. und nitidicollis Zett., sowie der Syrphus (und Lasiophthicus) sp., neue Unterschiede von Syrphus curvipes Boh. und triangulifer Zett., amoejms Lw. und t««6e^/atorMm F., eine Tabelle für die Melanostoma sp., Platychirus sp., Chilosia sp., Chrysogaster sp., Unterscheidungstabelle der gen. Pipizella Rd., Heringia Rd., Pipiza FW., Cnemodon Fg^. , Penn<«i Phil., Tabelle der Heringia sp., Pipiza sp. , Cnemodon sp., und Beschreibung von Penium car- bonari/mi Mg. Kowarz (^, ^. Williston (■') gibt Auszug aus einer 275 sp. um- fassenden Monographie der nordamericanischen Syrphiden ; er unterscheidet 1 6 Unterfamilieu , gibt analytische Tabellen dieser nebst deren Gattungen und behandelt besonders ^jiceratomym Will., Pelecocera Big. (Fig.) und Merapioidus (Big.) Will.; die Microdoninae enthalten Microdon Mg., die Pipizinae Nausigaster Will., Pipiza Fall., Paragus Ltr., die Chilosinae Lepidomyia Lw., Chalcomyia n. g., Myiolepta^Qwm., PsilotaMg., ChilosiaMg., Chrysogaster Mcq., die Me lanos tomin ae PyropÄaena Schin., Platychirus Qt. F. & Serv., Mela- nostoma Sclun., die Bacchinae Baccha, die Xanthogramminae Allograpta O.-S., Xanthogramma Schin., Mesograpta Lw., Sphaerophoria St. F. & Serv., die Sy rphinae ieMcozoMö Schin., Catabomba O.-S., Eupeodes O.-S., Didea Mcq., Syrphus Fbr., die Ascinae Sphegina Mg., ^s«a Mg., die Brachyopinae Rhingia ^cop., Brachyopa Mg. , Eugeniomyia Wü\ . , die Vol ucellinae Cojyfs/y- /um Mcq., Fo^Mce^^a Geoflf., die Erista liuae -Do^josyrjoÄws Big., Eristalis hix., 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 431 Pteroptila Lw., die Mallotinae Tropidia Mg., Polydonta Mcq., Triodonta, Pte- rallastes Lw., Mallota Mg., Teuchocnemis O.-S., Helophiliis Mg., die Serico- myinae Sericomyia Mg., Arctophila Schin., die Xylotinae Tropidia Mg., Senogcister Mcq., Sy^-itta St. F. & Sei'v., Xylota Mg., Chrysochlamys Rnd., Brachypalpus Mcq., Pocota St. F. & Seiv., Crioprora O.-S., Mempioidus Big., Criorrhina (Mg.) Mcq., die Milesinae Spiloniyia Mg., Milesia (Ltr.) Fbr., Cryspoioxmn Mg., Sphecomyia Ltr., Temnostoma St. F. & Serv., die Cei'inae Cena Fbr. und Pelecocera Mg. ^sci« quadripunctata Mg. = dispar Mg. var. 5, lanceolata Mg. - podagrica F.; Kowarz (2). Brachyopa ruhriventris n. ^ Australieu ; Bigot (^^) p 2-18. Chalcomyia n. von Myiolepta Newm. durch ungewöhnlich breites Schildclien und durch den Ocelleuhügel getrennte Augen des (^ verschieden; Williston (^) [cfr. Myiolepta]. Chilosia lasiopa n. (^, ^ Asch, Marienbad und Prag p 206, 204, 106, olivacea Zett. (? Verr.) = ? chalybeata Mg., cynocephala Lw. = rostrata Zett. , dimidiata Zett., rußtibia Egg. = chloris Mg. ; KowarZ ('-). Cnemodon rußcornis Mg. ^ = '^ morio7iellus Zeit. \ Kowarz ("-) . Doros conopseus F. var. hipunctatus n. ^ Frankreich ; Mik ('^J p 328 — conopseus Mik 1864 nee Fbr. = destillatorius n. (Paralleldiagnusen der ^); Mik (^) p 53. Eristalomyia notata u. Q Cap d. gut. Hoftnung ; Bigot ('■') p 249. Euceratomyia Will, von Merapioidus nur durch die Bildung der Antennalborste verschieden; Bigot ('); — = wahrscheinlich Pelecocera Big. ; Williston (•*). Eumerns crassitarsus n. (^, Q Sardinien; Costa p 30 — elegans Schin. e. p., Egg. (nee Schin. Q.) = ßavitarsis Zett. ; Kowarz (^j. Ischyrosyrphus tigerinus n. (^ Indien; Bigot ('•') p 249. Lasiophthicus annamites n. (^ Cochinchina ; Bigot ('^) p 250. Liops nom. emend. für Lejops Knd. ; Mik (') p 68. Melanostoma cyaneocincta n. (^ Mexico; Bigot ('') p 251. Melithreptus dispar Lw., nigricoxus Zett., strigatus Stgr. = scriptus L. var., pictus Mg., taeniatus Mg., dubius Zett. = menthastri L. var.; KowarZ ("-) . Merodon trochantericus n. (^ p 29 — rubidiventris n. (J* Sardinien ; Costa. Myiolepta aerea H. Lw. zu Chalcomyia n.; Williston ('). Ocyptamus fasciatus w. q^ Portorico ; RÖder (') p 342 — fenestratus n. (J' Mexico, fuscicolor n. Neu-Caledouien ; Bigot ('■^j p 251. Orthoneura varipes n. Q Mont Caucase ; Bigot ('^j p 249. Pipiza vitripennis Mg., anthracina Zett. = ? Cnemodon latitarsis Egg., leucogona, geniculata Zett. = ? Heringia Zetterstedtii Rnd. (J^, leucogona nicht = carbonaria Mg. Schin., lugubris Schin. = austriaca Mg., rms^naca Schin. =^ lugubris (F.) Mg.; Kowarz (2). Platychirus eiliger Lw. = tarsalis Schummel , cristatus Schummel = peltatus Mg. (nach den Typen) ; Kowarz (-) • Syritta vitripennis n. (^ Cap d. gut. Hoffnung; Bigot (*^) p 248. Syrphus euchromus u. (J' Asch (Böhmen) p 167, 135, 105, nitidulus Zett. Schin. - Melanostoma barbifrons Fll. ^, venustus Mg. = hilaris Zett., implicitus Mg. = venustusMg. Q, , comp ositarum Yei'V. = amoenus Lw., abbreviatus Zett., a^nisliW., excisus Schin. (nee Zett.) = corollae F. varr., latifrons Schummel = Mela- nostoma barbifrons Fll. ; KowarZ (-) . Xylota cuprina n. Q^ Indien; Bigot (^^j p 247. 432 Arthropoda, Familie Pipunculidae. Von den Philippinen nach Jordana y Morera Pipunculus 1. Familie Conopidae (Myopidae). Von Wellingholthausen nach Sickmann i^] Sicus 1, Myopa 2, Dalmania l, von Portorico nach RÖdcr (') Couops pictus F., Zodium nanellum Lw. Williston {'^) nimmt '6 Uuterfamilien an: Conopinae mit Conops nnd Physo- cephala, Myopinae mit Zodion, Dalmania, Oncomyia und Myopa und Stylogastri- nae mit Stylogaster, gibt eine Bestimmungstabelle der '6'6 nordamericanischen Arten, unter denen Sicus und Glossigona fehlen und nur Stylogaster keinen europäischen Vertreter hat und beschreibt genauer Zodion fulvifrons Say und nanellum Lw. , Myopa vesiculosa Say und clausa Lw. nebst 8 n. Conops gracilis n. (^ Arizona p 37 7, fronto n (]f , Q West-Kansas p 378, obscuri- pennis Will. = hrachyrhynchus Mcq. ; Williston (^j. Myopa pictipennis n. Q Arizona, Californien p 382, pilosa n. (J^, Californien p 383, plebeia n. Arizona p 384; WilMston (^). Zodion pictulum n. (J', Q Neu-Mexico p 379, leucostoma n. (^, Q West-Kansas, Montana, Arizona p 380, pygmaeum n. 0^,$ Californien, Colorado p 381; Williston (2). Familie Muscidae. A. Acalypteratae. Von den Philippinen nach Jordana y Morera Lauxania I , Sepsis 2, Calobata 6, Layyipro gaster 2, Dacus 3, Chlorops 1, Ephydra I, Notiphila 1, Sepedonl, Chyliza 1, Eurybata 2, Telostylus 1, Nerius 2, Scholastes 1, Notopsila 2, Adrama 1, Ä«- «;e^/m 1, Stenopterina 3, Antineura 2, Philocompus 1, Xenaspis 1, Naupoda 1, Enicoptera 1, Ptilona 1, Trypeta 6. Tephritis sp., Rioxa 2, Sphyracephala 1, Teleopsis '^, Diopsis 1, Celyphus 1, Dryxo 2, Paralimna 1, Diplocentra 1, Oscinis 1, Drosophila 2, Sapromyza 1, Anthomyia 1, Xe'sjoe 1, Musca 3, Ptitilia 1, Somomyia 1, Lucilia 4, /rfm 2, Ochromyia 1, Rhynchomyia t, Scopolia l, Sarco- phaga 4, Coenosia 1. — Cfr. PortSChinsky. Unterfamilie Borborina (Copromyzina, Heteromyzina). Von Hernstein nach Mik (') Limosia 1, Borborus 3, Coelopa frigida Fall. Psa^^tc^omyw/waco^ß Doumerc bei Marblehead, Mass.; cfr. Hagen (■'). Unterfamilie Scatophagina. Von Hernstein nach Mik (^) Scatophaga 3 ; von Wellingholthausen nach Slck- mann (^j Scatophaga 2. Ceratinostoma n. zwischen Scatophaga und Cordylura, mit der verlängerten, hornigen Proboscis und den zahlreichen Fibrissen jenes, und dem keuligen Abdomen des (J' dieses Genus, maritimum n. (;^, Q, Küsten Englands, gesellig mit Fucellia fuco- rum, Scatina litorea etc. ; Moado. Unterfamilie Cordylurina. Von Hernsteiu nach Mik (') Norellia 4. [Cfr. Unterfamilie Scatophagina,] 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 433 Unterfamilie Opomyzina (und Geomyzina). Von Hernstein nach Mik (') Opomyzaßorum F. Nach ;Röder (*) gehört Teta- nura zu den Opomyzina, nicht den Tanypezina. Unterfamilie Helomyzina. Von Hernstein nach Mik (^) Eccoptomera 1, Blepharoptera 1. Unterfamilie Dryomyzina. Von Wellingholthausen nach Sickmann (^) Dryomyza anilis Fall. Unterfamilie Sciomyzina. Sciomyza obscuripennis Big. = Lauxania variegata Lw. [Unterfam. Sapromyzina] ; Röder (M. Unterfamilie Te tanocerina. Von Wellingholthausen nach Sickmann (^) Tetanocera 2, Limnia 1 ; von Porto- rico nach Röder (') Sepedon macropus Wlk. Tetanocera tripunctata Dol. (Java) zu Euphya n. ; Wulp (^) p 221 Figg. [Ortalina.J Unterfamilie Drosophilina. Von Hernstein nach Mik (*) Drosophila 1. Unterfamilie Oscinina (Chloropina). Von Hernstein nach Mik (') Oscinis 1, Chloropisca 1 ; von Wellingholthausen nach Sickmann (^) Centor myopinus Lw. (von Crabro distinguendus Westw. für die Brut eingetragen; . Cfr. ferner Larsson, Lindeman. Unterfamilie E p h y d r i n a. Von Hernstein nack Mik (') Psilopa 1, HydrelUa 1, Scatella \, neu für Nieder-Österreich Hyadina nitida Mcq.; von Sardinien nach Costa Porydra lito- ralis Lw.; von Portorico nach Röder (') Notiphila erythrocera Lw. Unterfamilie Psilina.j Von Hernstein nach Mik (^) Psila 2, Psilosoma 2 ; von Wellingholthausen nach Sickmann ("^) Psila ßmetaria L. Unterfamilie Tanypezina ( ^M i c r o p e z i n a , L e p t o p o d i n a , C a 1 o b a t i n a ; . Von Portorico nach Röder (') Calobata fasciata ¥., lasciva F. Calohata ichneumonea n. Mexico : Brauer p 388 Figg, Micropeza limhata n. (f Portorico; Röder (^^ p 347. Nerius cinereus n. Portorico; Röder (') p 348. Tetanura cfr. Unterfamilie Opomyzina. g. Zool. Jaliresbericht. 1885. II. 28 434 Arthropoda. Unterfamilie Sepsina (Piophilina, Heteromyzina pt.). Von Hernstein nach Mik (') Sepsis 1, Nemopoda 1; von Portorico nach Röder (1) Sepsis discolor Big. Sepsis Guerinü Bigot zu Stenomacra; Röder (^) [Richardina]. Unterfamilie Trypetiua. Von Hernstein nacli Mik (^j Euphra7iia 1, Spilographa 1, Urophora 2, Tephritis 5, Oxyphora 1 ; von Wellingholthansen nach Sickmann (^j Tephritis bardanae Schrk. ; von der Normandie nach Gadeau Urophora cardui L. : von Algier nach Engel '}; TephriVs conura Lw.; von Portorico nach Röder (') Acrotoxa fraterculus Wd., Aciura insecta IjW., Ensina humilisljW.. Euaresta melanogastra Lw.; von der Delagoa-Bai 'Südost- Africa) nach Röder (^y Ceratitis capitata Wd., punctata Wd. (von capitata Wd. verschiedene Art mit ergänzter Besclireibung) und 3 n. Cfr. ferner Slosarski, Laugier. Ceratitis nitida n. cT, Q p 134, bimaculata n. Q. p 135, albo-maculata n. (^ Delagoa-Bai p 136; Röder (^) . Unterfamilie L o n c h a e i n a. Von Hernstein nach Mik (') Lonchaea dasyops Mg. Unterfamilie Sapromyzina. Von Hernstein nach Mik (*) Sapromyza 3, von Wellingholthausen nach Sick- mann ^, Sapromyza pallidiventris Fll., von Portorico nach Röder (^) Sapromyza octopuncta Wd. (ergänzte Beschreibung), cincta Lw., Lauxania 3, darunter varie- gata Lw., alhovittata Lav. [Cfr. Sciomyzina.] Unterfamilie Ulidina. Röder (*) verzeichnet vom. Voxiox'ico Euxesta annonaeY., costalisF., stigmatias Lw., spoliata Lw. Unterfamilie Rieh ardin a. Nach Röder (^) von Portorico Stenomacra [Sepsis] Guerinü Big. Unterfamilie Platystomina. Platy Stoma cincta Guer. zu Scholastes [Ortalina]; Wulp (^J. Stictomyia n. von Platystoma durch sehr verlängertes 3. Fühlerglied, basal kurz be- wimperte Borste, die nicht bis zum Flügelrande reichende S.Läugsader u. a. ver- schieden, longicornis w. (^, Q Mexico; Bigot [^) p 166. Unterfamilie Ortalina. Von Hernstein nach Mik {^] Thryophila frondescentiae L., Pteropaectria oscillans Mg. Mik (6) liefert eine Bestimmuugstabelle der gen. Ceroxys Mcq., Hypochroa Lw,, Anacampta Lw. und Holodasia Lav., eine desgl. der 4 Hypochroa sp. atri- cornis n., parmensis Rud., subapennina Rud. lind albipennis Lw., und Ergänzung der Beschreibungen von H. parmensis und subapennina Rnd., beide von der Salz- bach bei Salzburg und Algen auf Schilfrohr und Typha Juni. Juli. Wulp (^) 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 435 liefert eine Tabelle der Campy^cera sp. fuscipes n., ferruginea Mcq. {Conde, West- Africa) , robusta Wulp (Sumatra), longicomis n., myo/^ma Wulp (Beschreibung des Q von Java) und nuhilipennis n., gibt eine Tabelle der Lamprogaster sp. patula Wlk. (Salawatti Figg.), elongata n., limbata n., quaclrilineaWlk. (Waigeoe Figg.), taeniata n. , pumicata n., trisignata n. und behandelt Euphyci n., Scholasies LiW . und. A^igtiula Vf\k.: bekannt von den Südsee-Inseln seien Lmnprogaster 1, von Australien 8, von Singapore 4, von Borneo 1, von Java 1, von Celebes 2, von Gilolo 1, von Mysol 1, von Neu-Guinea 4, von Aroe 5, von Key 1. Acinia faciestriata Dol. = Scholastes cinctus (Guer.) von Java, Batjan, Gebeh, Mo- rotai, Aroe; Wulp (^j Figg. Angitula longicollisV<[\\i. = cyanea Guer. von Nord-Halmaheira, Gebeh, Obi, Morotai, Aroe; Wulp [^). Campylocera fuscipes n. (^ West- Java p 216 Figg., longicomis n. Q Java p 218 Figg., nuhilipennis n. (^ Conde (West-Africa) p 220 Figg.; Wulp (^j. Ceroxys (Mcq.) Rnd. = Anacampta -\- Holodasia Lw. ; Mik {^) . Chromatomyia Wlk. = Lamprogaster Mcq., ywamf/aWlk. = '? zu Celetor Lw.; Wulp '^). Elaphomyia polita Saund. = Angitula cyanea Guer.; Wulp [^). Euphya n. auf Tetanocera tripunctata Dol. (Java); Wulp (^) Figg. Hypochra atricornis n. (^, Q. am rechten Salzbachufer bei Aigen in der Auen auf Typha minima Hpp.; Mik i'') p 281. Lamprogaster elongata n. rf , Q Morotai p 228, limbata u. Q. Waigeoe p 228 Figg., taeniata n. cf, 2 Morotai p 229 Figg., pumicatau. (^ Neu- Caledonien p 2;-i0 Figg., trisignata n. (^ Andai p 231 Figg., bispinosa Wlk. (^ = patula W\]s.. Q, faciestriata Schin. , transversa., marginifera, sexvittata'S^Xk. = Scholastes cinctus (Guer.) sub Platystoma., guttata und divisa Wlk. = ? zu Scholastes. Melieria subapennina Rnd., parmensis Rnd. zu Hypochra Lw.; Mik (*^). Teretrura n. Scutellum mit 6 Makrochaeten , Oviduct breit, doppelt so lang als das flache Abdomen, oben tief längsgefurcht, Fühlerborste nackt etc., ßaveola n. § Chili; Bigot («) p I6ö. Uuterfamilie Agromyzina und Phytomyzina. Von Hernstein nach Mik (^) Phytomyza 1 , Agromyza 2(1?) nebst Profil-Fis". des Kopfes von Agromyza curvipalpis ? Zett. ; von Berlin nach KarSCh (^j Phyto- myza [Napomyza] annulipes Mg. Unterfamilie Ochthiphilina. Leucopis phylloxerae n. Nord- America , in Gallen der Diplosis grassator Ril.; Riley. Calypteratae. Bigot (^^) unterdrückt mit Rondani : Cassidetnyia Mcq. , Omalog aster Mcq. imd Sericocera Mcq. wegen absoluten Mangels an Homogeneität ; Cynomyia und Onesia gehörten weder den Dexina noch den Sarcophagina an , bildeten eine transitori- sche Gruppe zu den Muscina; seine Tabelle der Dexina umfaßt 63 gen., 2 n.. die der Sarcophagina 12 gen. Girschner beschreibt und bildet ab eine calypte- rate Museide mit starken , verschiedenfarbigen Fiederborsten am Kopfe in sym- metrischer Stellung an den Rändern der Stirnstrieme neben den unteren Fronto- orbitalborsten und in der das Gesichtsschild von den Wangen trennenden Unter- gesichtsfalte , die vielleicht Bombycidenraupenhaare seien ; die Fliege stehe als Muscine (n. g.) bei Graphomyia und Gymnodia R. D., sei als Tachinine eine Exorista [Carcelia R. D.). Mik (•^) glaubt die Girschnersche Fliege für eine Zu- 28* 436 Arthropoda. fälligkeit halten und die Grannenborsten als von einer Raiipe , in der die Fliege, eine Tachinine , ihre ersten Lebenszustände durchgemacht , herrührend ansehen zu müssen [vergl. Mycetophilidael . Unter familie Anthomyina. Von Hernstein nach Mik (') Chelisia 1, Pegomyia 1, Phorhia 1. Chortophila 1, Anthomyia 1, Hylemyia 2, Trichopticus 2, Homalomyia 1, Drymea 1, Hydrotaea 3, Hyclrophoria l, Aricia 3, Polyetes 1 ; von Wellingholthausen nach Sickmann {'^) Anthomyia 2 [albescens Zett. schmarotzt bei Diodontus tristis v. d. L.), Aricia 2, Hylemyia strigosa Fbr. (wird von Mellinus arvensis für die Brut eingetragen; ; von Australien nach Bigot {'O) Anthomyia canalicularis (^ , von Buenos Ayres Homalomyia canicularis L. rf ; von Portorico nach Röder '^j Ophyra aenescens Wd . , Anthomyia 2 , Coenosia 1 . Bigot (/") hebt die Unterschiede von Limnop hör a elega7is Mcq. und dubia n. her- vor, bringt Z)m/y^a Mg. in der ßoudani'schen Tabelle unmittelbar vor Caricea R. D. unter, characterisirt neu und ausführlich Prohoscimyia (Big.) siphonina^i^. (^ (1883), Spathipheromyia (Big.) stellata^\^. cf , Q (1884), Dasyphyma Big.) armata Big. (^ (1882) und beschreibt 67 n. sp. Cfr. ferner Holmgren, Osten-Sacken ^ . Anthomyia Sancti-Jacobi n. Q^ p 296, I?) rubi/rons n. Q Chili, monticola w. (J^,Q Nord-America (Mont. Rocheuses) p 297, (?) cothurnata n. Q, (?) dubia n. Q Chili, anthracina n. c^, Q Nord-America (Mont. Rocheuses) p 298, omdi/era i\. rf Baltimore p 299, Peroe Walker = ? Spiloyaster varians Big.; Bigot ''^^]- Chortophila tridens n. (^, sexdentata n. (^ p 27 7, appendicidata n. ^ Frankreich p 278, spinipesn. (^ Nord-America (Mont. Rocheuses) , rubrifrons n. ^ Buenos- Ayres p 279: Bigot ('o). Coenosia ? caledonica n. Q Neii-Caledonien ; Bigot (^'^ p 269. Dialyta bicolor n. (J' Mexico; Bigot (^^^ p 302. Homalomyia hispanica u. (^ Spanien p 283, mexicana n. (;J^ Mexico, dentata n. (^ p 284, rupecula n. (^ Nord-America (Mont. Rocheuses p 285, femorata Lw. = ? zu Dasyphyma Big,; Bigot (i",. Hoplogaster notatus u. (J^ Australien; Bigot (^^'; p 281. Hydrophoria dubia n. Q Frankreich p 274, (?) pictipes n., (?) calopus n. Mexico p 275, nigricauda n. (^f Nord-America (Mont. Rocheuses;, cincta n. § Ternate p 276; Bigot ("'). Hyetodesia cfr. Yetodesia. Hylemyia ßavicatidata n. (J' Nord-America (Washington Territorium) p 299, anr/j- co/« n. rf . 5 Chili , ornata n. ^ p 300 , tricolor n. rf, Q. Port Natal p 301 ; Bigot (10). Lasiops nitens n. ^' Frankreich: Bjgot (i'^) p 283. Leucomelina pica Mcq. = ? Limnophora elegans Mcq.; Bigot {^^]. Limnophora rufifrons n . Q. Frankreich p 27 0, limbata n. Q Mexico, Chili, chlor o- gaster n. ^ Buenos-Ayres p 271 , normata n. (^f, rußpes n. Q Mexico p 272, aurifera n. §, zebrina u. Q Chili p 273, anthrax u. (^ Mexico p 2 74, dubia n. = ? elegans Mcq.; Bigot (^^ . 2/isjt3« lestremensis n. Q Frankreich, Lestrem, D^p. du Nord, hirtibasis n. (^ p 292, spinipes n. Q , hottentota n. (;f , 2 Cap der guten Hoffnung p 293 ; Bigot [^^i . Ophyra argentina n. Q. Buenos-Ayres p 302, setosa n. (J', hirtula n. 0^,2 P ^03, andinan. §, jmsillau. Q Chili p 304; Bigot 10 Parachortophila tnodesta n. Q, Marocco, rußcoxa n.. Q Chili p 280 ; Bigot 'io\ 8, Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 437 Spilogaster schlecht characterisirt und unhaltbar — trisjnlus n. (^ Bueuos-Ayres p 285, alhicinctus n. Q^ Cap der guten Hoffnung, latevittatus n. Q. Port Natal p 286, pruinosus n. Q Ceylon, varians n. cf , ^ Port Natal und Ceylon p 287, Nubianus n. (^ Khartum (Nubien) , plumiferus n. Q. Cuba p 288 , fulvus n. q^ Nord- America (Washington Territorium), geniculatus n. Q Buenos Ayres p 289. bilimbatics n. (^,2? infuscatus n. (J' Nen-Caledonien p 290, leucocerus n. Q Molukken = ? zu Muscina R. D., fuhiventris n. (j^ Californien p 291 ; Bigot (^^). Syllegoptera curvinervis n. (§ ?) Osterreich; Bigot (^^) p 270. Trichophticus (?) ^m^«s n. (;f Frankreich, crenatus n. (;;^ Mexico p 282; BIgot ('**). Yetodesia dubia n. (^f, (?) chilensis n. cf , Q Chili p 294, (?) antarctica n. cTiQ Australien p 295; Bigot (lo). Unterfamilie M u s cina. Von Hernstein nach Mik '•}) Basyphora 1, Pollenia 2, Cyrtoneura 3, Mesem- brina 1. Calliphora 2, Lucilia 1, PyrelUa 1; von Wellingliolthausen nach Slck- mann (^j Graphomyia 1, Ccdliphora 1, Pollenia rudis F. und vespillo F. (von Mel- linus arvensis L. für die Brut eingetragen), Lucilia 2, Musca 2; von St. Peter nach Carlini Somotnyia caesar (L. , Stmnoxys calcitrans F. ; von Algier nach En- gel (-) /f/m lunata F., Rhynchomyia columbina Mg.; von Portorico nach Röder f^) Musea domesfica L., Compsowyia macellaria F., Liwilia rußcornis Mcq. (mit Be- schreibung) . PyrelUa centralis Lw.. ochricornis Wied., Ormia punctata R. D., Stomoxys calcitrans L. Bigot (^^) liefert eine synoptische Liste der 6 Glossina- Arten longipalpis Wd. [Nemorhina palpalis R. D.], fuscus Wlk., tabaniformis Westw., morsitans Westw. . tachindides Westw. und 1 n. Cfr. ferner Horväth (^i, Savard (2), Wulp ^^ , Davison. Glossina ventricosa n. (Q ?) Australien?; Bigot ('^) p 123. Unterfamilie Sarcophagina. Von Hernstein nach Mik (') Cynomyia 1, Onesia 2, Sarcophaga 2; von Wel- lingholthausen nach Sickmann ("^j Cynomyia 1, Sarcophaga 1 ; von Portorico nach Röder {}) Sarcophaga 4 plinthopyga Wd., lambens Wd.). Bigot (i^) gibt eine Bestimmungstabelle der Gattungen : Uramyia R. D , Blaesoxypha Lw. , Catapi- cephala Mcq., Peckia R. D., Toxotarsus M.(i(\. , ^poria Mcq., Theria R. D., Eg- gisops Rnd., Sarcophaga Mg., Sarcophila Rnd., Onesia R. D., Cynomyia R. D. Vergl. ferner Brischke [Sarcophaga, Onesia , Karsch ('). Agria Mcq. = Sarcophaga Mg. p. -1- Sarcophila Rnd. p.; Bigot ('''). Clyta R. D. = Sarcophaga Mg.; Bigot ('^). Gesneria R. D. = Sarcophaga Mg.; Bigot ('*]. Melinda R. D. = Onesm R. D.; Bigot ('^). Microcerella Mcq. zu den Tachinina: Bigot (^*). Myop)hora R. D. = Sarcophaga Mg.; Bigot /^) . Myorhina R. D. = Sarcophaga Mg.; Bigot (^^). Mcea R. D. = ? Sarcophila Rnd. p.; Bigot f'^K Oxydexia Big. = ? Uramyia R. D., eine Sarcophagine, nicht Tachiuine; Bigot (^*) [Cfr. Tachinina.] Phorella R. D. = Sarcophaga Mg.; Bigot (^4). Phryssopoda Mcq. = Pee^m R. D.; Bigot (^*) . Sarconesia Big. = Cynomyia R. D.: Bigot (^'*) . 438 Arthropoda. Unterfamilie D e x i n a. Von Wellingholthausen nach Sickmann (^) Thelaira leucozona Panz. ; von Por- torico nach RÖder (^) Dexia strenua K,. D. Nach Bigot ('^) sind Fabricia R. D. \va.(\. Demoticus M.Q,(\. keine Dexina, wohl aber Äly ob ia, Viviana nnd Pyrrosia Rnd.; B. gibt eine Bestimmungstabelle der Gattungen : Hystrisiphona Big., Hi- mantostoma hw . , Prosena Serv . , Gymnostylia Mcq., Rhynchiodexia Big., Rham- joÄmaMcq., Siphoniomyia Big., Rhamphinina Big., Toxocnemis Mcq., Rutilia R. D., Senostoma M.Q,(\. , Diaphania Mcq. , Pormosia Gu€v . , Amoenia R. D., Grapholosty- /wmMcq., Ptylostylum Mcq. , Diner a R. D., i)ea;imorpAa Rnd., ÄVostoma Rnd., Dexia Mg., Myostoma H. D., Silbomyia n., A'm.p)hibolia Mcq. , Myocera R. D., Sophia R. D., Puiherahw., Chaetogaster Mcq. , Platytropeza Mcq. , Spintherizo^nyia n., Jl/?7iMo R. D., ZeuxiaMg., Panzeria Mg . , Loeivia Egg., Sumpigaster Mcq. , Ptiloc haeta Knd., Megerlea R. D., Hilarella Und., Trichogena Rr\d. , Melanophora Mg., exm Mg.; Bigot [^^). Unterfamilie Tachinina. Von Hernstein nach Mik (') Echinomyia 4, Nemoraea 1, Macr Onychia 1, Trixa 1; von Wellingholthausen nach Sickmann (^j Servillea 1, Echinomyia 2, Nemoraea 1. Micropalpus 1, Tachina 1, Metopia 1, Macronychia polidon Mg. (schmarotzt bei Bombus terrestris L.); von Sardinien nach Costa Masicera scutellata Rob.; von Portorico nach Röder (') G^om« chilensis Mcq., Jurinia analis Mcq. ((J', Q be- schrieben), Belvosia bifasciata ¥ , , Blepharipeza leucophrys^^. , Echinomyia mo- desta Wd. Kowarz (^) gibt eine analytische Tabelle der Untergattungen Servillea, Peleteria, Fabricia und Echinomyia R. D. Vergl. ferner Brischke, Haase ('i, Horväth (J), Stein, Mik («, 3), Walsingham. Brischke beschreibt Varietäten von Tachina silvaticaYsW., p7'atensis Mg., scu- tellata Zett. ?, ßavescens Mg., Zett., [Nemorea] neglecta Mg., [Nemorea] maculosa Mg. ? (^J', [Tryptocera] pilipe7inis Fa.l\., [Tryptocera] bicolorMg., [Exorista] lucorum Mg. (= ? earma Fall., excavata Zett.) Q, [Exorista) quadrijmstidata Yhv . , [Exo- rista] vulgaris Y2\\. (^, [Exorista] stramitii/rons Zeit . , [Exorista] ßmbriata Mg. '?, [Exorista) fulva Fall., [Plagia] ruralis Zett. [verticalis Mg.) Q, [Plagia) curvinervis Zett. P , [Masicera) awulenta Mg. Bolbocheta n. p 4 4, haustellata n. $ Buenos- Ayres p 45 ; Bigot (*^). Brachycoma devia Rnd. = adolescens Rnd.; Mik (*) . Dasyromyia n. p 54, penicillata n. (j^ (^ '?) Chili; Bigot (^) . 440 Arthropoda. i>e^ema_/oi7/ro«s aus Raupen von Torti'ix vitaua, Nematus cheilon. Blennocampa rosarum, Preußen; Brischke p 21. Eurigaster obsciirus Big. = ? Exorista tessellata ßöd.; Röder ('). Exorista tessellata n. Portorico ; Röder (^) p 345 [cfr. Eurigaster]. Fabricia magnifica Mik zu Mikia u.; KOWarZ (\ . Gymnostylia Mcq. gehört nur mit den Arten von nackter Fühlerborste und ohne Ge- sichtsleiste zu den Tachinina, setosa Mcq. = n. g.; Bigot ('^) p 257. Meigenia bombivora Wulp = Brachycoma adolescens Rnd.; Mik [^) . Microcerella Mcq. Tachinine, nicht Sarcophagine ; Bigot ('^ . Mikia n. wie Echinomgia, aber 3. Fühlerglied nicht auffallend breiter und kürzer als das 2. [cfr. Fabricia]; Kowarz ('). Phorocera abnormis n. aus Acronycta auricoma-Raupen p 20, ßavibarbata n. (;f,Ql aus Gastropacha trifolii-Raupen, Preußen p 21 ; Brischke. Plagia setosa n. aus Porthesia auriflua-Raupen, Preußen; Brischke p 21. Tachina devia Fall., Mg., Zett., Schin. = ? Brachycoma adolescens Rnd.; Mik ('^j p 330 — rußfrons n. Portorico; Röder (') p 346 — nigrifronsn. Q aus Sphinx porcellns-Raupen , ripae n. aus Leucania Elymi-, Apamea suffuruncula- uud litorea-Raupen p 18, omnivora n. (^f, Q aus Vanessa polychloros- und Por- thesia auriflua-Raupen , Geometrae n. q^, Q aus Ortholitha cervinaria-Raupen p 19, Papilionis n. Q aus Papilio Machaon-Raupen, Preußen p 20; Brischke. Trichodischia n. neben Chetylia Rnd., caerulea n. [Q. '?) p 45, soror n. (^ Buenos- Ayres p 46; Bigot {^) . Unterfamilie O c y pt^e r in a. Glossidiomorpha w. von Ocyptera durch dünnes, starres Haustellum . ganz nackte Fühlerborste u. a. verschieden, nigra n. rf Buenos-Ayres, bicolor n. Q Austra- lien; Bigot ('^) p 55. Ocyptera atra n., minor n. (j^, Q Portorico ; Röder ('). Unterfamilie G y mn o s o m i n a. Von Welliugholthausen nach Sickmann (2) Gymnosoma rotundatum L.; von Sardinien nach Costa G. nitens Mg.; von Portorico nach Röder (^; G.ßliola Lw. Unter familie P h a s i n a . Von Sardinien nach Costa Phasia crassipennis F., Hyalomyia semicinerea Mg., Clytia helvola Mg. ; von Portorico nach Röder (^) Trichopoda pyrrhogastra Wd. Mik 1*) ersucht Girschner um Vergleich seiner Phaeomyia iimbripeimis n. mit Rondanis 1869-Publication ; er schlägt vor, die Phaeomyia&p. mit kahler 1. Längsader Pelidnoptera Rnd. zu nennen, für die mit behaarter Phaeomyia Schin. beizubehalten. GirSChner gibt Figg. zu Phaeomyia nigripennis F. und fusci- pennis Mg. Dimorphomyia n. (Tachinine ?) mit S y r ph i d e n k o p f u|n d M u s c i d e n f 1 ü g e 1 n p 173, calliphorides n. Q Mexico p 174; Bigot Lignodesia (sc. Lignyodesia] Rnd. nicht haltbar = Phaeomyia Schin.: Mik (^) . Phaeomyia umbripennis n. rf.Q. Thüringen; GirSChner p 1-3. Trichopoda ßava n. Portorico p 343, Haitensis R. D. = pyrrhogastra Wd. (Portorico); Röder ('). Familie Oestridae. Von Hernstein nach Mik (' Cephenomyia 1, Oestromyia 1. Vergl. ferner Haase (^), Ormerod, Robinson. 8. Hexapoda. XII. Diptera. B. Faunistik und Systematik. 441 Familie Pupipara (Anomalocerati Big. n.) Von den Philippinen nach Jordana y Morera Omithomyia 1 , Myophthiria 1 ; von Wellingholthausen nach Sickmann ('^) Hippobosca l, Omithomyia 2, Stenopte- teryx 1 , Melophagus 1 , Braula 1 . Nach Brauer könnten die Pupipara nur dann gegenüber und neben den Brachy- cera, Nemocera und Aphaniptera eine besondere Hauptgruppe bilden , wenn von allen Dipteren nur die Culiciden und Syrphiden existirten ; sie bilden vielmehr nur eine Abtheilung der Cyclorrhapha Schizophora , von denen sie sich ableiten lassen und von denen sie sich nur durch aus ihrer parasitischen Lebensweise er- klärbare Unterschiede auszeichnen ; Weismann's Ansicht , die Pupipara bildeten ein Bindeglied zwischen Tipuliden und Museiden , sei nur richtig in Bezug auf Concentration des Nervensystems , nicht als Dipterengruppen. Bigot (i^) führt für Pupipara den Tribusnamen Anomalocerati ein mit den Familien Zoobiae n. [Hippobosca, Omithomyia , Strebla, Lipoptena etc.) und Melitobiae (Nycteribiae und Braula), möchte Hippobosca in Zoomyia n., Braula in Melitomyia n. umtaufen, erachtet fp 227) die Gruppe wegen Degenerescenz wichtigster Theile (Antennen, Taster, Flügel, Augen, Schwinger, Haftläppchen) für eine Übergangsgruppe zwischen den Diptera und den Aptera der alten Autoreu und hält dafür, die Brauliden absolut , die Nycteribiden trotz ihrer Schwinger von den Dipteren auszuscheiden. Unterfarailie Hippoboscina (Zoobiae Big. n.). Von Hernsteiu nach Mik (^) Hippobosca equina L. Vergl. ferner Mc Murrich, Savard. Bigot ('"^) zerlegt sie in die »Curies« Streblidi [Kolenatia, Strebla, Raymondia, Brachytarsina] und Zoobidi [Camus, Eucte^iodes , Polyctenes, My- ophthiria, Ornithoica, Omithomyia 8 n., Hippobosca 2 n., Olfersia 7 n., Ocypte- rum, Lynchia, Chelidomyia, Lipoptena, ilfe/oj3Äayiseudargiolus of Boisduval and Leconte. in : Entomolog. Amer. Vol. 1 p 53. [506] , 21. Siehe Forbes, H. O. [493] ,, 22. 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Acherontia atropos und Smerint/ms populi [?] Honigräuber auf Sicilien ; Kobelt p 101. 3. Morphologisches und Physiologisches. Abnormitäten. Brauer bespricht ausführlich die allgemeinen morphologischen Charactere der Lepidopteren und ihre Stellung im System der Insecten. Schatz theilt die Farben der Schmetterlingsschuppen in solche, welche auf Farbstoff, imd solche , welche auf Interferenzerscheinungen beruhen ; auch die Flügelmembran kann gefärbt (stets grün) sein, z. B. Colaenis Dido, Danais Cleona und Papilio Pliorcas. Ferner wird das Flügelgeäder besprochen und seine große systematische Bedeutung hervorgehoben. Dasselbe nebst Palpen etc. der Gattun- gen der Papilioninen (14 g.), der Pierinen (45 g.), der Danainen (6 g.) und Neo- tropiden (11 g.) werden abgebildet. J. B. Smith {^) bespricht und bildet ab die Structurcharactere der »Zygaenidena-Gattungen Nord-Americas. Nach Demsel- ben ('') sind die Hinterbeine der Bombyciden ebenso lang wie die vordersten oder kürzer, die Hinterbeine der Eulen und Spanner dagegen stets länger als die vor- deren. Riley ("-) hebt die Wichtigkeit der Structurverhältnisse hervor. Nach Anonymus ('^) sind die Tarsen von Carpocapsa saltitans durch lange Schuppen- federbüsche verborgen. Packard (-) zählt bei den Raupen 3 Thoracal- und 10 Ab- dominalsegmente, das 9. ist jedoch oft (z. B. Sphinges) undeutlich. Lagoa cri- spata Fsick. hat 7 Paare Abdominalfüße (am 5.-10. und 13. Segment); die des 5. und 13. Ringes sind rudimentär nach Packard [^). Die Bedeutung des Cremasters der Puppen als Artkennzeichen wird hervorgehoben von Packard (^j . Tetens (2) weist nach, daß die Schuppen der verschieden gefärbten Stellen der Flügel von Gonepteryx rhamni Q^, 5, G. farinosa (^J^, Q, und Vanessa levana und prorsa auch verschieden geformt sind. Vergl. *Slack. Schilde f^j bespriclit aus- führlich die Ähnlichkeiten und Verschiedenheiten in den Zeichnungsanlagen der Rückseite der Hinterflügel von Argynnis und Melitaea und erklärt die letzteren zum Theil durch die Verschiedenheit im Rippenbau, indem die Mittelzelle bei Melitaea geschlossen ist. Über die Anatomie der Raupen von Vanessa poly Moros und La- siocampa potatoria vergleiche Franpois und *Lameere. Vergl. auch Hy. Edwards (6), Howgate und Parfitt. Geschlechtscharactere. Schilde (') beschreibt die Männchenschuppen von Colias Lihanotica, De Nicevillo (S^) dieselben von Papilio Rhetenor (auf der Unter- seite der Hinterflügel), Terias laeta und T. Hecabe. Barrett (^) beschreibt den Costal- umschlag der englischen Tortriciden, vermißte aber bei einigen Arten (z.B. Penklc- riana, die eingeschlossenen Haarbüschel. Ein Costalumschlag findet sich auch bei Eujwecilia maculosana. Ist nur ein Schmuck der (]f . Goding beschreibt die Analanhängsel des Clenucha /ulvicollis (^ . Bertkau und Dewitz (^) besprechen 476 Arthropoda. die Haarpinsel von Catocala(^^ Acherontia(^ undi Sphinx jnnastri (^ [s. 0. p 163]. J. B. Smith ('•*) beschreibt die (^f Copulationsorgane der Zygaeniden, Syntomiden, Sesiiden und Bombyciden. Thecophora fovea Tr. (^ hat eine eigeuthümliche Grube auf den Hinterflügeln Tonapparat ?) Lehmann ('). Bei einem Ephestia Kühniella § fand Bertkau 70-95 Eier in jeder der S Eiröhren. Nach H. 0. Forbes sind die Q von Appias, Catopsilia und Belenois mehr oder wenigstens nicht minder grell gefärbt als die (^. Hermaphroditismus. Becker (') (7ri>/^ys«/'/iry?)e ?) ; Blandford (2) [Odo- nestis potatoria (^f von der Farbe des Q.]\ Christy & Meldola [Odonestis potatoria]^ Hudson (^) [Euffonia angularia rechts (^ , links Q. , Pli/sia verticülata: Flügel links (J*, rechts Q. , Körper (j^. Vanessa goiierilla rechts (^ ?, links Q ?) ; Röber (^) [Argi/nnis Paphia links ^, rechts (J', Q gemischt); Steudei & Hofmann {Limeni- fis populili. rechts Q , links (^) und VenuS (^) [Pieri Napi var. Bnjoniae rechts Q., links (3f ) . Abnormitäten. Cockerell (^; ; Wutzdorf[^) [B omby x qtm-cns (^ ))n\\v raii QmQxo. Beine rechtS") ; Fallou (^] ; Junge (^) [Rumia luteolata linker Hinterflügel gelb, rech- ter weiß] ; Röber {*) [Limenifis populi, ein fünfter Flügel am Innenrande des lin- ken Hinterflügels); Strecker (^ ^) [Samia Cecropia mit 2 linken Vorderflügeln) und Thorwarth (^) [Smerinthns populi Q. rechte Flügel größer als linke etc.). Phigalia pedaria Fabr. (^f mit monströsen Antennen Lampa p 97. 4. Biologisches. a. Einfluß des Climas; Flugzeit; Anzahl von Generationen; Züge und Schwärme. Walsingham (2) weist nach, daß die meisten hochnordischeu Arten dunkel sind, um Wärme absorbiren zu können. Als Ausnahme von dieser Regel er- wähnt GoSS (') Fidonia piniaria, Cidaria corylata und Coenonympha typhon^ welche in Schottland lichter als südlicher sind. Sorhagen (-) fand die Schmetterlinge der Torfmoore von Hamburg oft ungewöhnlich dunkel gefärbt. Kane (2) bemerkt, daß Arten, welche auf Irland im October bis März auskriechen, flügellose Q haben, um, wie er glaubt, von den Stürmen nicht weggerissen zu werden; nahe stehende Arten, welche im Sommer fliegen, haben geflügelte Q. Derselbe (^j hebt hervor, daß Ehopaloceren in höheren und kälteren Gegenden lichter, Heteroceren dagegen dunkler und schärfer gezeichnet sind ; das Clima wirkt hauptsächlich auf die Far- beustufe ; die Nahrung hat keine oder geringe Bedeutung, wenn es sich nicht um Schutzfarben handelt ; denn Cleora Uchenaria wird gelb gefleckt, wenn sie von Xan- thosia parietina lebt. Nach B. P. Mann und J. B. Smith (i*) sind kalte Winter für die Lepidopteren günstig, heiße und trockene Sommer aber sehr nachtheilig ; vergl. 6. Baiding ('-) . Raspail dagegen glaubt, daß die Häufigkeit von Acherontia Atropos \\n^ Sphinx convolvidi i. J. 1885 auf diesen Eigenschaften des Sommers beruhe. Hülst {^) behauptet, daß die Variationen, welche man der Temperatur, der Feuch- tigkeit und der Nahrung zuschreibt, ihren Grund in erhöhter oder verminderter Lebensthätigkeit haben. Aaron (2) klagt über die Sommer und bemerkt, daß an- dere Schmetterlinge stets selten sind in den Jahren, wo Vanessa cardiii gemein ist ; Lycaena Arion ist wahrscheinlich durch das ungünstige Wetter der Jahre 1881- 1884 in England ausgestorben. Seltene Arten zahlreich bei Wolmar im Sommer 1884 nach Lutzau. Viele Stücke von Van. atalanta sterben während der Über- winterung Freer. Fallou (^) liefert mehrere Beispiele davon, daß die Nährpflan- zen exotischer Spinner im Winter starben, die Schmetterlinge aber fortlebten. Piepers ("*) bemerkte, daß einige Arten nur bei gutem Wetter auskommen. Rogen- hofer (2j traf Van. atalanta starr vor Kälte bei 7,6" und 1 1 500' Höhe, Agrotis simii- lans aber lebendig bei -|- 0,5° und 8S00' Höhe. Harding (2) fing MeUtaea atirinia bei 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. A. Allgemeines. 477 1200'. — Behr (^) erwähnt die Flugzeit und Überwinterungsart von 45 Rhopa- locera, 7 Sphiuges und 28 Bombyces aus Californien. Sorhagen (2) liefert die Flugzeit für 79 sp. aus der Umgegend Hamburgs. Die Flugzeit wird ferner be- sprochen bei Jefferys (^) (lO sp. ans England) , Delorme (vergleicht dieselben sp. in denVogesen und bei Mentone), Harrington ('^) [Pieris rapae 1. Apr.; Van. aniiopa 9. Apr.) , Fitch ('^) [AsthenaBlomen], JefferyS [^) [Eriogaster lanestris] , Lang [^j [Ar- gynnis Pandora] , PauX [Calamia lutosa 15. Oct.-5. Nov.) und Stansfield. — Zwei Generationen haben Aulocera Paclma (im Sommer meist (;f , im October meist ^ ) Graham-Young ; Cidaria ßavicmctata Gross; Angerona jirunaria (Livland) SJnteniS (2); Eupithecia linariata und Acidalia virgularia (England) RaynOr (^); Eudorea angustea Barrett (^); Tortrix prodromana H., Gelechia scoünella H.-S., Lita Mo^ ritzella H. Sorhagetl (^j, und Platypiilia gonodactyla Tutt (**, ^). Auf Irland hat Lycaena icarus nur eine Generation nach Sandford C^) und bei Tromsö Vanessa urticae nach Schneider (^). — CuUas Edusa überwintert als Imago, stirbt aber sehr oft Clifford (^). Vergl. auch "Reynolds. — Über beschleunigtes Ausschlüpfen von Schmetterlingen durch Zimmerwärme sprechen Fischer ['^) und Gauckler [^). Neren erhielt von Charaeas graminis die (^ stets früher als die § • Oeketicus platensis Berg aus Eiern gezogen in Europa Heylaerts \^i. — Über ungewöhn- liches Erscheinen von Lepidoptera schrieben Clifford (^) [Macroglossa stellatarum Dec.-Jan.), J. Fletcher (*^j (iVoWfw^a «menV'«»« im Herbst) , Homeyer (3) [CJmma- tobia brumata frische Q^ 6. Dez.), Rendall (^) [Cucullia verbasci 21. Nov.), Sang (^J [Hepiahis humuli Ende August), Sharp '•}] [Eugonia quercinaria 17. Oct., Plasia iota und Van. aialanta. Verpuppen 17. Oct., Amphidasys betulariiis, Eier gelegt im September), Sheldon [^] [Thera variata 26. Sept., Argynnis aglaja 1. Aug., Rau- pen von Eupithecia pimpinelluta klein noch 14. Oct.), Siadon (^) [Iterostoma pal- pina 3. Aug., Hepialus lupulimis 11. Aug., Dianthoecia capsincola 8. Sept.), Swin- ton (') [Argynnis pandora \m Aug., Spanien), ThuraU [Pälophora plumigera, Hy- bernia leiicophaearia, Anisopteryx aescidaria, Cheimatobia brumata 2 l . Nov.- 1 1 . Dez.) und Zapater [Triphosa sabaudiata im Winter). — 2 Jahre als Puppen ruhen Pa- pilio Datmus W. H. EdwardS ('), Lycaena iolas Baker (-), Eiidromis versicolor und Dicranura vinula Sladon (-) ; 3 Jahre Harmonia pini KelliCOtt (2) ; 2-5 Jahre Erio- gaster lanestris Sladon ('-) und 4-5 Jahre Cucullia Scrophnlariae Esp. Ralfe. C'atocala Fraxini kriecht beinahe stets um 9-10 Uhr Nachmittags aus. Poujade [^^) — Züge und massenhaftes Auftreten erwähnen Bankes [Butalis senescem), Bird (Tausende, 37 sp., nebst Libellen im Bukit Berapit Passe, Malacca), Butler (") [Hiposcritia argyridina, Schwärme in einer Richtung fliegend), Camerano [Vanessa cardui 7. Juli 1883, Zug 9,4 Meter breit, 10 Meter hoch, 1-3 Uhr Nachmittags), Clifford (^, ^), Cordeaux (•) [Plusia gamma 2.-3. Juli, Bombyx neustria 21.-22., 22.-23., 27.-28. Juli, Helgoland), Ebrard (^) [Vanessa cardui], *6ill [Vanessa atalanta)^ GiraudeaU; Hamilton [Danais archippus), Hoy (\) , Kobelt [Vanessa cardui], NorNs (^J [Colias Edusa) , Raynor^^) [Tortrix viridana] , W.SaundorS (') [Pap. Philenor 1858 in Canada), W. Saunders(^) (rawessamrc/wi), Schneider (\ Argy7i?iis sekne \8S'i, Co- lias palaeno 1884, Nemeophila plantaginis 1884, Cidaria sordidata 1884, Cid. hastu- lata 1883-1884, Eupithecia satyrata] , %Q\x\\\ [^') [Plusia gamma, Nomop/iila noctu- ella] , Tarle [Acher. atropos, Sphinx convolvidi] , Wintle [Danais Archippus, Vanessa cardui] und Zapater [Pieris daplidice] . — W. H. Edwards ['^) bespricht das Aufbe- wahren der Raupen auf Eis. — Über Schmetterlinge zur See vergl. man Ficalbi [Vanessa cardui, Colias sp., Noctua sp.), GoSS (^j, MaC Lachlan (', 2) und JVia- thew (^). b. Beziehung zur Pfanzenwelt und bemerken swerthe Gewohn- heiten. Focke bespricht Nägeli's Einwände gegen die Blumeutlieorie. Die extra- floralen Drüsen von Sambucus javanica werden von Pieriden besucht H.O. Forbes 478 Arthropoda, p 227. Butterfield (') verzeichnet Arten, welche er auf «ragwort« fing. Cockerell (^] bemerkte, daß Gonepteryx rhamni hellrothe Blumen liebt. Nach Meldola (^) besucht Sphinx convolvuli die Blumen von Oenothera biennis. Christy •^] sah, daß Papilio asterias die gelben Blätter von Betula glandulosa irrthümlich für Blumen [?] hielt. Künckel d'Herculais erwähnt, daß Attacus cynthia im Jardin des Plantes den einzigenPhellodendron amurense(eineXanthoxylidee, mitAilanthus nahe verwandt) aufgesucht hat und da zahlreich lebt. Machin [^) bespricht 4 Tortriciden und 6-7 Tineiden als Gallenbewohner. — Schmetterlinge an Aphiden saugend erwäh- nen DUZ66 und Jack [Vanessa antio^ya, Limenitis arthemis, L. disippus). Euploea ocJisenheimeri und Cynthia jiiliana werden vom Schweiß angezogen nach H. 0. Forbes p 138. Johnston sah am oberen Congo viele Tausend Schmetterlinge dicht beisammen am Sande des Ufers Feuchtigkeit saugend p 198, 202; viele saugen auch Blut von getödteten Thieren p 331. Pryer ("^) sah Arten von Papilio^ Pieris und Cyrestis saugend auf den Guanolagern einer Grotte Borneos. Vergl. auch Frivaldszky und Rendali (2). — Jack fragt, warum Phydodes iharos ein treuer Begleiter von Danais archippus ist. — H. 0. ForbOS bemerkt, daß Cyrestis perian- der stets im Schatten der Urwälder fliegt p 137, daß die Cyrestis ihre Flügel stets flach ausgebreitet halten p 1 7 2 und daß Amnosia decora längs den Baumstämmen auf und nieder fliegt p 173. Über Flugweise verschiedener Schmetterlinge vergl. ferner Harding ('), Hill ('), Hulbert, Mathew (i), Mac Rae (2) (Flug geräusch- los) und Mohnike. Die Schmetterlinge und nicht die Puppen von Sphinx convolvidi, Sph. ligustri und Acherontia Atropos graben sich durch die Erde empor beim Aus- schlüpfen; Poujade (i^). Vergl. auch Jos. Anderson und Coste(2). Puppen ohne Cocons von Bomhyx nmistria imdAglia Tau Cavanna (2), von B. neush-ia Rabaud (^). — Eulen werden durch Eisenbahnwagen verschleppt nach Reed. — Über Fang am Licht sprechen Bishop ('), Campbell (2), Claypole, Hy. Edwards ("*) (S Rhopalo- cera), Fowler (^j, Karsch ('], Robinson, Swinhoe (^j [Choerocampa Nessus Dr.) und Thaxter (fliegen stets gegen den Wind) . c. Mimicry. Schutzfärbung. Euploea Co?-e Gram, und ^. TTo/^a/-? Feld, sind nicht, wie Moore glaubt, Beispiele von Nachahmung nach de Nlceville (^). Als Beispiele von Nachahmung (»Mimicry«) werden besprochen : Hypolimnas mi- sippus 5 variirt bei Aden und ahmt alle 4 Formen von Lim^ias chrysippus nach Butler (2); Papilio Catmus Westw. — Euphra rhadamanthus, Pap. Caunus wax. aegiahis Dist. — Eupl. diocktiantis, Pap. Caunus var. aus Borneo — Eupl. Lowei Distant (^); Kophene Jfeyers« Heyl. — Perina nuda Fabr. HoylaortS '\^)\ Papilio Antinorii Q Oberth. — Hypolimnas duhius, Euphaedra Eleus, welche jedoch nicht in Abyssinien vorkommt [!] Khell ; Pa7wethia inmilpata Weym. — Eusemia mnllis Pagenstecher (') ; ScoUomima insignis ^ni\. (Fig.) — Triscolia patricialis BüYva. Pryer (^j; Papilio Alddinus BnÜ. (Fig.) — Nyclalemon Agaihyrsus Kirsch. RÖbor (^); Ithomia fallax '^is^Vidi. — Heliconius aristiotia Jlevf. oder Mechanitis Methone Hew., Helle, nietahilis Butl. — Melinaea messatis Hew., Helic. zuleika Hew. — Tithorea Pinthias Salv.-Godm., Helic. ms/??); Aglia Tauh. Savard('^j, Anonymus ('*); ^msotearten haben die Puppen nackt in der Erde WaterS & Hülst; Antheraea Menippe Westw, (Fig.) BairstOW; Attacus cynthia Dr. Clarkson (-1, Düring, Girard (^o)^ Poujade(^^) (Polyphagie), ^dim^; Attacus Pemyi Guer. (Fig.) FallOU (^) ; Brahmaea lunulata Brem. var. Christophi Stgr. Romanoff ; Bu - naea caffraria Stoll.(Fig.) BairstOW; Cricula trifenestrata WaillyC']; Eacles iinperialis Packard ^^; ; Endromis versicolor L. (die Puppe wandert zur Oberfläche) MÜhlwenzei (-j, Poujade ("); Hemileuca Maia Dr. Goodhue; Hyperchiria io [11 sp.) Beutton- müller; Platysamia Cecropia, Promethea ClarkSOn ('^) ; Hybride Raupen von Platy- samia Ceanothi Q und P. Cecropia (J' Wailly ('^); Platysamia columbia var. No- Äo?ms Christy (*j, Satumia Suraka Boisd., Sat. sp. Camboue (-j; Saturnia pyri Girard (*), Romanoff; Satumia galUna (Gocon in der Erde' Waters & Hülst; Sat. cephalariae Rom. (Fig.), S. pavonia h., S. caecige7ia Ku]) . Romanoff; Telea Poly- phemus ClarksOn (■^) • Drepanulidae. Drepana lacertinaria L. (Fig.), Dr. falcataria L. (Fig.) Portschinsky. Notodontidae. Cerura vinula L. Hunt ('^; , (Eier mit Pore) Hunt (1), (nutzt in Gefangenschaft nicht seine Thoracaldrüse) Clifford (^) ; Datana sp, (Puppen in der Erde) Hy. Edwards (^); Datana ministra Packard (■*); Edema albifrons WdiXV\x\^\Q[\ (- , Packard (^) ; Ichthyura palla, /. oniate French (2, -t ; Lochmaeus tessella, Lophodonta angulosa Packard (^) ; Phalera bucephala L. Romanoff; Platy cerura für cilla Harrington (2) ; Uropus «/mt Schiff. Romanoff. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. A. Allgemeines. 483 Limacodidae. Parasa chloris H.-^Gh.. French (^1. Psychidae. Psyche quadr angu- laris Chr. Lucas (^), Romanoff; Psyche demissa Led. (Sack), Psyche sp. (Sack Fig.) Heylaerts (••). Cossidae. Cossus Ugniperda Girard (■*) ; Cossus alni (n. sp. ?, nur Raupe und Puppe) Kellicott (■^); Cossm sp. Becker ('). Hepialidae. Charagia virescens (verdeckt die Puppe sehr gut) *Hoffmann (^), Hudson ('). Noctuae. Acantholipes regularis Yih . Romanoff; Achaea nielicerta Dr. (Fig.) Moore (^j, Swinhoe (S^); Achaea serva F., reversa Wsdk. (Figg.) Moore (^) ; Acronycta cuspis Hb. Romanoff ; Acronycta alnih. (Fig.) Portscfiinsky, Romanofif; Adris rutilus Moore (Fig.) Moore (^); Agrotis pronuha L. HellinS (^; ; Agrotis myn'cans und ^nWct auch als Raupen verschieden J. Gardner (^); Agr. tritici^ aqui- lina und ohelisca verschiedene Raupen Gregson (^) ; Agr. exclamationis Humbert ('); ^^r. /mm'm Tausch (Fig.) Cook, Saunders (^); Agr. declarataW&\k. Saundors (2,5); Anaria miniult B. Behr('); Anthophüodes Moeschleri Chv. Christoph (^j; Apatela Grote (^); Arasada pyraliformis Moore (Fig.) Moore ('); Atethniia canes- cens B. Behr (^); Azazia ruhricans Boisd. (Fig.) Moore ('); Brotolomia meticulosa L. Homeyer (^); Caranilla one^/rt Guen. (Fig.) Moore (^;; Catocala neonympha Esp., C. nyniphagoga Esp. Romanoff ) Catocala elocata Esp., C. conjuncta Esp. Miniere (^); Cauninda archesia Cr. (Fig.) Moore (^); Charaeas graminis L. Neren; Chariclea vtciorina Soä. Romanoffj Corcohara Thwaiiesi Moore (Fig.) MOOre (^); Cosmia pyralina, difßnis, afßnis, trapezina Z\[VQWqx\ (^) ; Cuctdlia sp. TetonS (^); Cucullia Teichii Berg (^j; Dichonia aprilina HellinS (^); Dichrotnia orosia Cr. (Fig.) Moore (^); Biloba coeruleocephala , Dryobota protea W^\\\x\S (•^); Dysgonia joviana Cr. (Fig.) Moore (*); Erastria obliterata Bhv . Romanoff; Erastria venustula (»Canni- bal'«) J. A. Cooper (^); Eriopus purpureofasciata Pill. Romanoff; Euperia sanibuci Behr ('); Gonophora derasa Ronianoff| Hadena adusta Esp. Schneider (2); Hadena sa^wr« Jordan (^) ; Heliophobn,s lolii [popularis] Chretien(^); Heliothis iynperialis'&i^v. (Fig.) Romanoff; Homoptera lunata Dr. Lintner C^); Hulodes caranea Cr. (Fig.) Moore (^;; Hypocala efflorescens Gu6n. (Fig.), Ischyja manlia Cr. (Fig.) Moore ('); Lagoptera magicaUb. SwinhOO (^); Laphygma exigitaRh. Chrotien ['■^) , Lichton- Stein; Leucania unipuncta Haw. (Fig.) Riley (^) ; Lithocampa ramosa Lehmann (^); Macaldetiia jjalumba Gnen. (Fig.) Moore (^); Maenas salamitiia Cv. (Fig.) MoOre (^); Mamestra brassicae h. Humbort ('); Mamestra picia Harrington (2); Mamestra variegata Austaut (^); Megalodes eximia Yvx . Romanoff; Mestleta abrupta^sCik., M. angulifera M.OOYQ, M. zV/-eeto Walk. (Figg.) Moore (^); Metoponia Koekeritziana Hb. Romanoff; OpMderes cacica (ahmt Vögelexcremente nach) (Figg.) Ernst; Ophiodes seperans Walk. SwinhOO ('); Othreis ancilla Cr. (Fig.) MoorO (^); Pasi- j9ef/a ÄaeTOo?'/-Aoa Guen., P. satellitia Moore (Fig.) Moore (^j; Penicillaria jocosatrix Guen. Swinhoe (*); Pericyma albidentaria ¥xv . Romanoff; Polytela gloriosaeF. Swinhoe (^); PseudopMa syriaca Bugn. Romanoff; Remigia friigalis ¥ . (Fig.), Rhytia hypermnestra Cr., Seiepa strigifera Moore (Fig.), Serrodes campana Guen. (Fig.) Moore (^); Simyra dentinosa Frr. Romanoff; Simyra argentacea Becker ('); Sonagara sciiaria WaXk., Stictopfera subobliqua Walk. (Figg.) Moore(^); Stilbia anomala Porritt(^), Riding ('); Thyas coronata F. (Fig.) MoOre (\i; Thyatira batis L. (Figg.) PortSChinsky; TinoUus eburmiguttaWaXk. (Fig.) Moore(^); Trigono- phoraflammea WoodbridgO (^J; Xanthia ferriiginea Machin (^). Geometrae. Acidalia herbariata F. WockO (^) ; Acidalia nigrojmnctata Hufn. (Figg.) Sepp; Acidalia italicata W\\\. , A. luteolaria Gonst. (Fig.), A. robiginata Stgr. (Fig.), ^. ase/^ana H.-Sch. ab. ruminataWiW. (Fig.) Milliere ('); Anisopteryx vernata Peck. Lintner (^) ; Aplodes coniferaria Packard {^] \ Apocheima ßabellaria H.-Sch. Romanoff; Cidaria sordidata F . , C . hastulata Wo . , C . alchemillata ^q\\[\q\- der (^); Cidaria reticidata (auf Impatiens noli längere) Hodgkinson (^); Cidaria taeniata Steph. , C. scripturata Hb. *GrOSS; Endropia textrinaria Packard (^) ; Eu~ 31* 484 Arthropoda. caterva variaria Doil ; Eumacaria brunnearia Fack. KelliCOtt (^); Eupithecia Car- rington (^); Eupithecia nepetata ChrotiGn (''); Eupithecia artemisiata Constatlt ('); Fidonia piniarialu. Anonymus(^); G nop hos serotinaria B.h. (Fig.) Rogenhofer (\) ; Hybernia defoliaria L. AnonymuS ('-J] ; Hybernia tiliaria Harr. (Fig.) SaunderS ('>*); Larentia brumata L. AnonymuS ('^] ; Liodes tibiaria Rb. (Fig.) MilMere (^); -Me- lanthia undata Girard (^) ; Metanema quercivorana Packard (^); Paraphia depla- naria Packard (^) ; P/iorodesma jjrasinaria ^v . Romanoff| Rhyparia melanaria (auf Leclum) Wutzdorf (^); Tetracis lorata Packard (^) ; Thamnonoma acquiaria Mill. Miiliere (^); Zerene grossulariata L. Anonymus ("). P y r a 1 e s. Ragonot (^•^) bespricht melir oder minder ausführlich die Raupen der brittischen Phycitiden und Galleriiden. Sorhagen (^) bespricht die Lebensweise und die Nahrungspflanzen der Arten der Mark Brandenburgs. Gen. "? sp. ? (in Ciavaria flavalis) Tetens(') ; Achroia grisella (bei Hummeln) HoffeP('); Acrobasis sodalella Zell., A. consociella Hb.. A. tumidana S. V., A. Zeilen Rag. RagOnot (', ^3); Aphomia colonella L. Hoffer (^); Asopia farinalis Hcilins ('); Botys nubilalis Hb. (Figg.) Robin & LabOUlbene; Crambus zeellns S. A. ForbeS ('); Ephestia Knhniella Zell. LandoiS ;^); Euzophera conicolella GQ[\S\.dil\\. (^); Horniffia anelhis 8. V. Ra- gonot ('^); Hydrocampa nymphaeata Sorhagen (^); Ilythyia cribrum W. V. (Figg.) Sepp; Margaronia Wood/ordi BnÜ. Woodford; Metasia olbienalis Gn. var. aegi- tralis Miiliere {^) ; Myelois advenella Zinck., 31. epelydella Z. Sorhagen (^j ; Orthaga euadnisalis Walk. (Fig.) Moore (^); Paraponyx oryzalis (Fig.) ^Wood-MaSOn ; Pempelia palumbella ¥ . RagOnot(2); Pionea forßcalis Wwmh^vi (^); Scopula qua- dralis Dowhl. Purdie; Stericta helvialis ^aXk. (Fig.) Moore (^); Threiiodes polli- nalis Sorhagen (^]; Zophodia cactorum Berg (-). Tortrices. Cacoecia alopecana Meyrick i;^); Carpocapsa saltitans Westw. Lint- ner (^). Anonymus ('^l; Coccyx taedana Griffith (V) Cochßis badiana H. Sorhagen (2); Cochylis inulana Constant ('); Ephippiphora tetragonana HodgkinSOn ("), Sang (^j; Euchromia arbutana, E . ßammeana ^x\\\\^ ('Vi Grapholitha caecana (im Stamme von Onobrychis) Coverdale (^) ; Gr. Hohenivarthiana Tr. Sorhagen (^, ; Harmologa oblongana Walk. Meyrick (^) ; Oxypteron impar Stgr. Christoph ('); Paedisca oppressana Wood (^) ," Peronea caledoniana Steph. (auf Vaccinium myrtillus] Barrett C^); Phlaeodes immundana Baiding (^ ; Phlaeodes tetr aquefrana ySood ('); Phthoroblasiis argyrana Bh . Sorhagen(^); Retinia ^Mn'o«ß«a MachinC^j ; Retinia posti- cana Zeit. Sorhagen ('-) ; Rhophobota ge77iinanaWocke Sor\\a.Qen i'^]; Sciaphila sedana Constant (^); Teras Lipsiana, Shepherdana, decretana Sorhagon ('V. Tortricodes hye- mana Richardson; Tortrix crataeganaB.., T. ;jrof//-oman« H. Sorhagon (^ ; Tortrix viridana L. J. A. Cooper (2), Girard (^). Vergl. auch J. Mann und Sorhagen ('). Tineae. Gen. ? sp. ? (in Haselkätzchen; Baiding C^); Anacampsis albipalpella Machin (^); Anchinia dohmiellaMn. Sorhagon (2); Antispila Pfeifferella B.. Sor- hagen C^j; Argyresthia Goedartella L. Baiding ('); Biicculatrix maritima Stt. Ra- gonot (^*^); Bucculatrix LIntner {^)\ Butalis scopolella RagOnot (^); Butalis focella Constant ('); Cemiostoma taburnella St. Sorhagon (2); Cemiostoma citella Zell. Cornu; Ceratophora tineolellaZ., Cerostoma 7-adiatellum Don., C. nemorellum h. Sorhagen (^] ; ChauUodus insecurellus Stt. (auf Thesium humifusum) W. Fletcher (^), Stainton (', 4); ChrysocUsta Linneella Cl., C7ir. aurifroniella H. (Fig.) Sorhagen (^); Coleophora squamella, C. wacroÄ«e//a Constant (') ; Coleophora [snhg. 3Ietallo- setia) 5 sp. Stainton (8); CoZ. melilofella Scott Ragonot (^); Col. potentillaeBoyä. Elisha(2); Col. vibicigerella (auf Artemisia maritima) Elisha(S3, , Machin [^)\ Col. lineosella (Stachys lanata) Douglas; Col. viminetella Z., C. leucapennella E. Sorhagen (-); Col. tinctoriella Covordalo C'); Cosmopteryx eximia Haw., C. Lieni- giellaZ. (Fig.) Sorhagen (2); Cryjjtolechia uruguayensis Berg (2); Dactylota Kin- Äere^^aSn. Snellen (3); Z)asysi!oma sa^jce^/umH. Sorhagen (2); Depressaria prostra- 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 485 tella, D . cervariella ^QX\S\diX\\[^)\ Depressaria Heracliana, Exaeretia allisella^i. Sor- hagen(2j; Gelechia plutelU/ormis S>tgv. Christoph ;2) ; Gel. rumicivorella Mill.(Figg.) Milliere ('); Glyphipteryx oculatella in Ähren von Carex vulpina) W. Fletcher (3); Glyphipteryx Haioorthana Steph. Sorhagen (-1; Goniodoma Millierella Rag. Constant (-;, Coverdale ("^j; Gradlaria syr'mgella Girard C^); Heliozela Hammo- niella (nur die Mine) Sorhagen (-^j ; Heliozela resptlendella St., Heydenia fulvigiittella Z. Sorhagen (^j; Hyponomeuta Sidimion ("*); Hypotia famaricalis Mann Ragonot (6) ; Laverna phragmitella Stt. (in Typhaähreu) Ragonot (*) ; Lita acuminatella Sirc, L. Huebnei'iilsiW.., L.tnaculi/erellaDgl., L. Halo7iella}i.-8c]i. Sorhagen (^) ; Lila gallicella Constant (^) ; Lithocolletis comparella Zell, (in Blättern von Populus Bolleana) Cornu; Lithocolletis geniculella Rag., L. padella Glitz, L.sorbi Frey, L. corylifoliella Haw. Sorhagen (^); Lithocolletis hetulae Sorhagen (^); Nepticula sp. (auf Potentilla tormentilla) Sang (^); Ochsenheimeria vacculella (in morschem Holz?) Stainton ("); Phyllocnistis suffusellaTi., Ph. salignaZ. Sorhagon {^'i\ Plu- tella crucifcrarum Z. Schneider (^); Plutella Hufnageli Z. Sorhagon (^); Plocheusa coleella Constant ('); Scythropia crataegella Coopor ('^j ; Stagmatophora divitella Constant (') ; Symmoca stoechadella, Tachyptilia hirsutella Constant (^] ; Tinea rufi- metrella Schneider ('); Tischeria Heinemanni Wk . , T. dodonaea Hd. Sorhagen (^). — Vergl. ferner in Bezug auf Nahrungspflanzen etc. J. Mann und Sorhagen (S^j. Pterophori. Kurze Notizen bei J. Mann und Sorhagen ('). Aciptilia punctinervis Constant (1); Cnaemidophorus rhododactylus ¥h . (Fig.) South (^) ; Mimaeseoptilus scahiodactylus GregSOn (^y ; Mimaeseoptilus plagiodactylus Stt. (Fig.) South('*, ^); Oedematophorus pelodactylus Berg {}) ; Pterophorus Bertrami Porritt (^j ; Ptero- phorus 7nonodactylush. (Fig.) South(^); Pterophorus punctidacty Ins Bte\)h. Porritt (^); South (2) verzeichnet Arten, deren Raupen er nicht gesehen hat, und erwähnt ihre Lebensweise nach anderen Verfassern. B. Faunistik und Systematik. 1. Allgemeine Faunistik. Schatz theilt die Erde mit Wallace in 6 Regionen und bespricht ausführlich die für jede Region characteristischen Tagfalter. Die paläarctische Region hat ca. 580 sp. mit 50 gen., von denen 14 [Doritis, Isynene, Thais, Luehdorfia, Sericinus.^ Mesapia, Davidina, Leucophasia, Araschnia, Melanargia, Triphysa, Polycaena, Laeosojns , Nemeobius) ihr eigenthümlich sind , und zerfällt in 4 Subregionen : 1. Europäische Subregion (Mittel- und Nord-Europa) 150-160 sp. 2. Mittellän- dische Subregion. 3. Sibirien und Amur-Gebiet. 4. Japan und Nord-China. Die äthiopische Region hat von eigenthümlichen Gattungen : Papilioniden 1 , Pieriden 2, Danaiden 1, Nymphaliden 10, Satyriden 6, Lycaeniden 11 und Hesperiden 3, dazu kommt eine einzige für Madagascar eigenthümliche Satyriden- gattung Heteropsis. Die orientalische Region wird in die himalayische und die malayische getheilt. Die neotropische Region ist die reichste der Erde und zählt ca. 4560 sp. auf 272 gen., von denen nicht weniger als 231 dieser Region eigen- thümlich sind. Die nearctische Region zeigt einen durchaus europäischen Cha- racter, indem nur im Süden tropische Formen sich beimischen; von 50 gen. sind 32 paläarctisch. Derselbe bespricht ferner die geographische Verbreitung der Schmetterlinge nach Familien. J. B. Smith (^, *^^) bespricht die für Europa und Nord-America gemeinsamen Arten und zeigt, daß einige, welche Möschler [vergl. Bericht f. 1S84 II p 483] als identisch erklärte, verschieden sind ; er zählt 11 gemeinsame Agrotisa,vten. 486 Arthropoda. 2. Faunen. Paläarctische Region. *Hofmann publich-t die 3.-9. Lieferung seiner Arbeit über die Schmetterlinge Europas. Roüast beendigt sein Verzeichnis der bekannten Raupen Europas. Vergl. auch Lang (^ ^) und *Staudinger P). Kane {^) publicirt ein Handbuch der euro- päischen Tagfalter und beschreibt 13 n. Varitäten. Algerien. Austaut {^) Rhopalocera 4 n. var., Noctuae 1 n. sp., In. var. Baker (^) beschreibt als neu : Pieridael, Lasiocampidae2, GeometraeS, Pyralidae 1, Tortricidae 1 und Tineidae 3. Bei Kobelt findet man Sammelberichte aus ver- schiedenen Localitäten auf p 59, 107, 203, 310, 315, 353-354; Sjjhitix nerii nicht in Algerien p 211. Mabille (^) beschreibt Zygaenae 2 n. und Agrotis 1 n. Oberthür (^) bespricht Arten vom hohen Berge Djurjura (keine alpine Form wurde angetroffen) und beschreibt Geometrae 2 n. Saalmüller {^) verzeichnet Rhopalocera 38 und Heterocera 29. Seriziat verzeichnet Rhopalocera 52 und Heterocera 135 aus der Umgegend von CoUo. Vergl. ferner Saalmüller [^], Staudinger (^) und Vallantin. (Variation von P. Feisthamelii bei Batra.) Belgien. De Borre. Central-Asien. Siehe Sibirien. Deutschland. Sorhagen (^) verzeichnet (mit Flugzeit und Lebensweise) aus der Mark Brandenburg Pyralidae 170, Tortricidae 309, Choreutina 4, Tineina 634, Pterophori 35, Alucita 3 und Micropterygina 12 und als Anhang 291 sp., welche in der norddeutschen Tiefebene, aber nicht in der Mark gefunden wurden. Der- selbe (^) bespricht Microlepidoptera 79 sp. aus der Hamburger Gegend in Bezug auf Flugzeit und Nährpflanzen. Als neu für Deutschland werden Melissoblaptes cephalonica St., Phoxopteryx curvana Zell, und für die Hamburger Gegend Tortrix crataegana H. und T. prodromana H. erwähnt. Derselbe (■*) verzeichnet aus dem Hamburger Torfmoor Pyralidae 35, Tortricidae 88, Tineae 127, Pterophori 13 und Alucita 1 und dazu 63 sp., welche an ähnlichen Localitäten in Nord-Deutsch- land gefunden wurden. Eisenach verzeichnet mit Angabe des Monats und der Häufigkeit Rhopalocera 79, Crepusculares 25, Bombyces 54, Noctuae 99, Geo- metrae 92, Pyrales 19, Tortrices 9, Tineae 11 und Pterophori 2. — Deilephila Nerii Ij. Glaser(2), Hoffer (2), Homeyer (^j (in Schlesien). — Sammelberichte liefern: Gauckler (1), Gerth, Glaser (i), Homeyer (^), Junge (2), Karsch(2), Kitt- steiner (2) (4 var.), Lehmann (2, 3), Pagenstecher (3) (vielleicht eine orientalische Art", RÖber(2,-*) [Psyche viciella^QM\&., Mesagona oxalinaWa., Catephia alchymista Schiff, neu für die Dresdner Gegend), Schattenmann (aus Schweinfurt, Bayern), *Schmid, Standfuss {^), Steudel & Hofmann (4 var.), Tetens (i) {CuculUas^. ? aus Holstein, Pyralide ? aus dem Rheingau), Thierry-Mieg [Aglia Tau aberr. aus Eichsfeld, Thüringen) , Thorwarth (2) (5 var.), Wocke (2, *~6) [Plusia modesta neu für Schlesien) und Wutzdorf P, '^) (6 var.) . Egypten. F. A. Walker. England. Von *Coleman's Handbuch ist eine neue Auflage erschienen. Kirby (2) publicirt ein neues Handbuch der Schmetterlinge. Ragonot (^^j verzeichnet und bespricht alle Phycitiden und Galleriiden Englands (45 sp., 5 sp.). Vergl. auch *Robson i^) und Thomson (53 sp.). — Als neu für England sind zu bemer- ken: Lijcaena argiades Pall. Cambridge; Chilonidae gen. ? sp. ? Fitch (') ; Ti- neidae: Coleophora paludicola n. Stainton C^/ ; Gelechia tetragonella n. Stainton ('*] ; LithocoUetis Anderidae n. W. Fletchor (2); Nepticula assimilellaZQW. W. Fletchor (^y ; Nepticula Nylandriella und Ornix fagivora Griffith ('). Sammelberichte liefern 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 487 E. Anderson, Barrett \^), Blandford ('), Brady (2) (Bombyces 12, Diepanulidae 3, Pseudobombyces 4, Geometiae 133), Bright, Butterfield (2), Carter (^ ^), Cocke- rell (^ ■% Cordeaux p), Dawson, *ElliS (Pieridae 4, Nymphalidae 16, Satyrinae 10, Erycinidae 1, Lycaenidae 10, Hesperidae 4), Elstowe, E. Gardner, Goldth- waite & *Rose, ^Goldsmith, Goss (*), Gregson (^), Hawes (', 2 , *Hedworth, Th. Hill (2), Hodgkinson {^, ^) (7 Beispiele von Melanismus), LIvett, Mitchell, *Pearce, Mosley (^j, Porritt (^ ^^, ^\ ^'^), Pullen (35 Tagfalter, 14 Schwärmer, 44 Spinner, 145 Eulen, 132 Spanner, 39 Motten und 104 Wickler), Rjding l^), W. A. Rod- gers, Roebuck & Clarke (in jeder 48 sp., wovon 44 gemeinsam), Rose, Sheldon (^), Sladen (•), Smethurst, St. John ('), *Sutton, Tutt (2), Wheeler, Wilson, Wright, Vaughan, Anonymus {^^) und Anonymus ('2) (Rhopalocera 40, Spliingidae 19, Bom- byces 57, Noctuae 164, Geometrae 162, Pyralidae 33, Pteropliori 12). Die Ver- breitung folgender Arten wird besonders besprochen: Rhopalocera. Argynnis lathonia L. Fox; Colias Ednsa L. Anderson jun. (3), Blaber [^). Clifford (^), Costa (1), Frohawk, L F. Hill, Meldola ('), Raynor {^), St. John (2). Tite, Tomlinson, J. J. Walker; CoUas Hclice Anderson jun. (^); CoUas hyale L. var. Raynor (^), Weir (^); Danais Archippiis Cr. R. J. Anderson, Cuthell, Eaton, Freeman, Jenkin (2), Weir (2), WeSStropp; ^re^m casseo^e ROWntree ; Gnne2Jteryx rhamnih. Dale, WostwOOd & Mc Lachlan, White; Lycaena argiadesVsiW. Cambridge, A. H. JoneS, St. John(^); Lycaena aryiolus h. Roobuck; Lycaena Arion h. (nicht in England 18S 1-1884) Marsdon; Lycaena Bellaryus Anderson jUn. (2); Lycaena corydon Bishop (2), HodgkJnSOn (^), Sharp ('); Melitaea cinx{a\zx. (Guernesey) Lowe; Papilio mac/iaonJj. loy, Pieris daplidicelu. B. Coopor; Polyonwiatus Phlaeas Lusby; Pyrameis Huntera Barclay (') ; Satynis Tithonus Kow; Vanessa Antiopa\j . Bolt, A. E. Hall ; Vanessa atalanta Clifford('^) (inNord-Kent), *Gill; Vanessa cardui Z\\^QyA{^,'^]\ Foness« /o Clifford (^); Vanessa polychloros'L. Sholdon (') ; Sphingidae. Acheroniia Airopos h . Anderson jun. (^), Carter (2), Goss (2), Kerry [^), Macmillan (^), Meldola (i), Nixon, Norris (2), Nowers; C/werocampa celen'o L. Mye (', -), Barclay (2), Benson, Blandford p), Borer, Buckley, Cooper(^), Cregoe, Edgell, Goldthwaite(2), Harker, Kerr, Kerry(2), King, Mc Rae ('), Meldola ('), Miller, Nicholson (■), Pegler, Stevens, Venables, Wellmann (', 2]^ Wood (^); Choerocampa NerU L. Gardner (2/, Sphinx convülmU L. Anderson jun. ('), Bailey, Barclay P), Beddard, Blaber (^), Blandford (^), Be- stock, Cave-Browne, Druitt, Edgell, Goldthwaite i), Goss (2), Jordan (2), Kay, Kerry (2), Macmillan (2), Meldola P), Mutch, Nash, Nicholson ('), E. Saunders, St. John p), Tristram, Venables, Waterhouse(2), Williams, Woodbridge (2). Bombyces Deiopeia pulchella L. Chittondon, Jenkin (1), Mc Rae (^j ; CalUmorpha Hera L. Brooks (2), Jager; Lasiocampa iUcifoUa L. Porritt (■*); Liparis monacha Bono; Ocneria dispar Blaber (2), Raynor ('^j; Pterostoma palpina Elllot; Zygaena ßlipen- dulae var. Ochsenheimeri (neu für England) Boden. Noctuae. Acronycta alni L. Tero; Agrotis praecox Crallan; Aporophyla nigra Marriott; Bryophila algae Hodg- kinSOn (^) ; Catocala Fraxini Pottor; Cirrhoedia xerampelina Moldrum; CucuUia artemisiae BrOOkS (^) ; Eraslria fuscula Brady (^); Eremobia ochroleuca Frohawk, Whittle; Euphasia catena Thornewill (Ex. No. 2 in England gefangen 1878 ?) ; Heliothis peltigera ClarkO ('), Porritt (^j, RobSOn (•^); Luperina Dumerilii Dunnlng, Farren (vom Verf. in Süd-England 1858-1859 gefangen), Hodgklnson (^); Lupe- rina Guenei (englisch) HodgkinSOn (l); Noctmi suhrosea AnonymUS C^); Taenio- campa leucographa Blaber (') ; Taeniocampa AnonymUS^^). Geometrae. Asthena Blomeri Fitch (2), St. John (^) ; Collix sparsata Porritt (^'^j; Eupithecia rectangulata Barrett {^^]\ Eupithecia constrictata Porrltt [^^]\ Melanippe ßuctuata ^^vvq\\ {') \ Phihalapteryx vittala (nicht polygrammata in Essex) Woodbridge ('^) . Pyrales. Cranibus alpinellus AtmOrO ('^j; Crambtis myellus ElÜSOn; Ennychia cingulalis Carter (■*) ; Epischnia farrella AtmOrO (^) ; Eudorea portlandica Dale, E. phaeoleuca Zell. ^3g Arthropoda. 1 (nicht in England) Stainton [^]; Myelois ceratoniae Coverdale (^), Tutt (^j ; Scopa- ria lineolalis (nicht crataegalis) Poppitt ("). Tortrices. Grapholitha caecana Tutt (5, 9j ; Paedisca oppressana Machjn (^) ; Sciaphila aärasana Sang (^j; Tortrix podana Bappett ['^^). Tineae. Coleophora subg. Metallosetia Steph. (5 sp. in England) Stainton (^/ ; Coleophome Machin (^) ; Coleophora mm-ucipennella Tindali,' Coleo- phora paludicola ^isäni. Coverdale C^); Coleophora t'mctorielh, COVerdalO ("); Ge- lechia tetragonella AtmOre(^); Ochsenheimeria vaccidella MachJn ("); Trifurcxila palli- della Griffith [-] . Pterophoridae. PlatyptiUa South (3) . Vergl. auch Popritt (^] und South (5). Frankreich. Constant (^) beschreibt als neu 4 Spanner, 3 Motten, 4 Wick- ler, 23 Schaben und 1 Aciptilia, die meisten aus Corsica und den Meeresalpen. Milliere (^) beschreibt und bildet ab eine neue Acidalia und bespricht 11 andere sp. Kane ('^) erwähnt eine neue Varietät von Papilio Machaon aus Paris und Corsica. Milliere (^) liefert Nachträge zu seinem Verzeichnis der Lepidopteren der Meeres- alpen und erwähnt als neu für Frankreich /Sma bibionifonnis Esp., Lithosia cereola Hb., Po^m s«e«- (?cma 6, Pseudacraea 1, Godartia 1, Neptis 5, Aterica 1, Nymphalis 11. Eryci- nidae: Abisara 1. Lycaenidae: Lycaena 20, Hypolycaena 7, Sithon 1, Thecla 2, Deudorix 1. Pieridae : Pontia 1, Terias 5, Pieris 13, Erotiia 3, Callidryas 3, Teracolus 3, Anthocharis 7, Idmais 3. Papilioninae : Papilio 13. Hesperidae: Ismene b, Systole 1, Trapeziies S, CyclopidesQ, Proteides 1, Pamphila 7, Acleros 1, Eagris 1, Tagiades 1, Plesioneura 1 und Gegenes 1. CambOUe 'C'^) bespricht Boro- cera madagascariensis Boisd. und 2 *S'a^M/'m«- Arten als Seidenspinner. Fodinoidea n. sp. Butler (^2); Lithosian. sp. Mabille (^j; Precis u. sp. Staudinger ('); I^ä- thima M. sp. Butler (^^). — Matabele Land: Papilioninae 1; Pierinae 29, Callosune b n., 7en«s 1 n.; Acraeinae 12 (8 n.); Nymphalinae 11 ; Danainae 1 ; Satyrinae 4, Mycalesis l n.; Lycaenidae 12, Zeritis 1 n., Lycaena In.; Hes- peridae 5, Pamphila 2 n.; Sphingidae 5, Choerocampa 1 n.; Zygaenidae 6, Zy- gaena 1 n. Euctenia In.; Agaristidae 4; Eusemia In.; Saturniidae 3 Saturnia 2 n. ; Limacodidae Limacodes 1 n.; Dasychiridae 1 Westwood. — Mombas: Antheraea n.siß. Maassen & Weyding. — Monrovia: Prmsn, sp. Staudinger (')• — Natal: Cß^^sMwe n. var.; Prms 2 n. var. Staudinger (*). — Old Calabar: Gohimbrasian. sp. MaaSSen & Weyding. — Ost-Africa: Acraea 3n., Precis n. Staudinger ('). — Quango: Gonimbrasia Fig. Maassen & Weyding. — Sene- gambien: Rochebrune und Mabille ('). — St. Vincent Insel: Botydidae 2, Phycidae 1 n., Crambidae 1, Pterophoridae 2 Meyrick (^o). — Süd- Africa: Eusemia 2 n., Saturtiia 2 u. Westwood ; Prem n. var. Staudinger (i) . — Zan- zibar: Bunaea 2 n., Antheraea 2 u. MaaSSen & Weyding. Indische Region. Staudinger !/') bespricht oder bildet ab Callidryas 2, Delias 2, Gonopteryx 1, Colias 2, Hebomoia 2, Zrms 4, Idmais 4, Callosune 2, Midea 1, Hestia 1, Ideopsis 1, Danais 5, Euploea 3, Acraea 2, Cethosia 3, Terinos \, Cirrochroa 1, Argynnis 1, Symbrenthia 1 und Vanessa 1. Localfaunen. Afganistan. Swinhoe (^) ver- zeichnet Rhopalocera 43, Sphinges 6, 1 n., Bombyces 2, Noctuae 28, 8 n., Geometrae 4 und Pyralidae 10. — Andamanen. Hebomoia n. var., Cynthia n. var. Staudinger (i). — Birma. *Wood-Mason. Prothoe u. Butler (^o); Eusemia n. Druce (■■^) ; Trabala n. Moore (*) — Borneo. Sammelberichte bei Burbidge und Pryer(2). Danais agleoides Feld. n. var. Staudinger (^); Prothoe n. Butler (^'^) ; Neocheritra n. Druce (^) ; Papilio n. H. 0. Forbes; Scoliomima n. g. (Sesiidae) Butler in Pryer (3) ; Udaiana n. Distant (^). — Brittisches Vorderindien (mit Assam und Himalaya). Swinhoe (^~^) ver- 492 Arthropoda. zeichnet und bespricht aus Bombay und Deccan Euploeinae 8, Satyrinae 9, 1 u., Acraeina 1, Nymphalinae 24, Lemouiidae 4, Lycaenidae 39, 5 n., Pierinae 50, 8 n., Papilioninae 10, 1 n., Hesperidae 19, 1 n., Sphingidae 25, Zygaenidae 8, 2 n., Agaristidae 3, Cbalcosiidae 1, Nyctemeridae 1, Lithosiidae 20, 2 n., Arctii- dae 15, 3 n., Liparidae 25, 4 n., Notodontidae 11,3 n., Bombycidae 2, Lima- codidae 5, Lasiocampidae 18, 3 u., Drepanulidae 1, Saturniidae 4, Cossidae 2, Hepialidae 1, Noctuae 214, 28 n.; die neuen Arten sind zum größten Theil ab- gebildet. Derselbe (') traf bei Kurrachee nahe der Grenze von Beludschistan Tagfalter 70, 3 n., Schwärmer 9, Spinner 17, 1 n., Eulen 52, 16 n., Spanner 20, 4 n., Motten 30, 6 n., Wickler 1 und Federmotte 1. De Niceville {^) ver- zeichnet 28 sp. als Nachtrag zu seiner vorigen Liste über die Tagfalter Sik- kims. Derselbe (^l liefert ein Verzeichnis von 163 sp. aus der Umgegend von Calcutta und beschreibt eine neue Catochrysops. Derselbe (^; beschreibt und bildet ab hauptsächlich aus Sikkim Symbrenthia 1 n., Lycaenidae 2 n. und Hes- peridae 8 n. Moore ,^j erwähnt aus Cachar Sphingidae 7, Bombycidae 46, 2 n. Noctuae 23, Geometrae 11 und Pyralidae 3. Aus Manipur und Assam verzeich- net Butler [^^] Euploeinae 10, Satyrinae 10, Elymniinae 1, Morphinae 2, Nym- phalinae 43, 5 n., Acraea 1, Erycinidae 2, Lycaenidae 7, Pierinae 27, 2 n., Papilioninae 12, 2 n , Hesperidae 1, Sphingidae 1, Bombyces 8, 2n., Geometrae 2 und Noctuae 2. Satyriden aus Himalaya Graham-Young^ Prothoe n. s. Butler (!*'); Gonepteryx n. Butler {^]; Delias 2 n. Butler (^); Papilio n. Moore l'^) ; Hesperia 2 n., Tagiacles 1 n. Plötz (^), Amesia 1 n. (Cbalcosiidae^ Druce \}). — Gele bes. Snellen (^) schließt seine Bearbeitung der Schmetterlinge von Celebes ab und verzeichnet 19 (12 n. ; Figg ) Tineiden und 11 Pterophoriden (nicht beschrieben, weil zu schlecht conservirt); dazu liefert er als Nachträge zahlreiche Bemerkungen zu den vorigen Abtheilungen, Sammelbericht aus Banti- moerang liefern Ribbe & Kühn. Junonia Orithyia L. var n., Callidryas scylla L. var. n., Danais cleona Gram, kommt nur auf Gelebes und den Molukken vor Staudinger (^); Plesioneura 1 n., Hesperia 3 n., Apaustus 1 n., Thymelicus 1 n., Telesto 1 n., Tagiacles 2 n., Ismene 1 n. PlÖtz (^j; Sataspes 1 n., Syiitomis 2 n. Röber i*^); Sesiomorpha n. g. (Tineae) Snellen {^^). — Geylon. Moore (^) setzt seine Bearbeitung der Eulen fort und behandelt die Familien Ophiusidae 4sp., Homopteridae 12, 1 n,, Hypogrammidae 28, 5 n., Catephiidae 22, 3 n., Hypo- calidae 2, Catocalidae 4, In., Ophideridae 7, Phyllodidae 3, Erebidae 1, Ommatophoridae 7, Hypopyridae 7, Bendidae 1, Dysgoniidae 48, 3 n., Tinolii- dae 1, Euclidiidae 3, 1 n., Poaphilidae 2, In., Remigiidae 2, Focillidae 16, 5 n., Thermesiidae 24, 3 n. Amphigoniidae 2, Platydidae 2, Hypenidae 28, 5 n., Herminiidae 51, 10 n. und beginnt die Pyralidae 100, 17 n. Plötz (^; beschreibt als neu Proteides 1 , Hesperia 1 , Apaustus 1 und Antigonus 1 . Salebria i Phyciti- dae) n. Ragonot i}^,. — China. Aus Hongkong verzeichnet Eastlake Danainae 7, Satyrinae 12, Morphidae 1, Nymphalinae 21, Lycaenidae 3, Pierinae 12, Papi- lioninae 13, Hesperidae 4 und Heterocerae 14. Rondotia n. g. (Bombycidae) Moore (2). Vergl. auch Butler [^). — Japan. Butler (^) beschreibt Gonepteryx 1 n. Derselbe [^] beschreibt als neu Sphingidae 2, Arctiidae 2, Lithosiidae 4, Liparidae 6, Lasiocampidae 1, Notodontidae 3, Limacodidae 2, Drepanulidae 2, Bombycidae 2. Cymatophoridae 2 und Noctuidae 8. Vergl. ferner *Pryer (^). — Java. H. 0. Forbes. Charaxes Schreiberi God. selten bei Batavia Pie- pers (2); Hesperia 2 n. Plötz (^i; Teinopyga n. (Lithosiidae) Snellen (') ; Psychidae 2 n. Heylaerts [^, ^]. — Kabia Insel (bei Celebes). Röber [">] bespricht Cynthia Arsinoe Gram. var. Deione Er. (bisher nur aus Java), Acraea Androinache Fabr. var. (neu für diese Region), Euploea n., Pieris n. und Omithoptera Hali- phronBo'i^di. n. var. — Keeling-Inseln. Die Anzahl der Arten hat sich 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 493 • seit Darwin's Besuch 1836 vermehrt; Sammelbericht p 31 H. 0. ForbeS- — Malacca. Distant (^) hat die Lycaeniden (Fortsetz. ; 45 sp., 8 n.), die Pierinen (12 gen., 2 n., 36 sp., 1 n.) und die Papilioninen (3 gen., 32 sp., 3 n.) bear- beitet und abgebildet. Mycalesis n. Distant (^): Elymnias r\.., Charaxes u. Hon- rath; Appias n. Distant ('-) ; Deltas ithiela Butl. Typus aus Darjeeling und nicht von Penang Butlor (^'), Plesioneura 1 n., Hesperia 1 n., Isoteinon 1 h., Ta- giades 3 n. Plötz (^). — Nias. Pagenstecher (1) bespricht Sphingidae 8, Castnii- dae 3, Agaristidae 2, Chalcosiidae 8, 2 n., Syntomidae 4, 2 n., Arctiidae 3, In., Aganaidae 4, Lithosiidae 16, 1 n., Liparidae 2, In., Noctuae 26, 2 n., Geometrae 18, 2 n., Pyralidae 20, 3 n. und Tineidae 3 und liefert eine tabella rische Übersicht der Verbreitung dieser Arten. Weymer beschreibt und bildet ab Danaidae 6, 2 n. sp., Satyridae3, Nymphalidae 14, 4n., Lycaenidae 2, Pieridae 1 n., Papilionidae 4, In., Sphingidae 3, Callidulidae 3, Agaristidae 2, Chal- cosiidae 2, Nyctemeridae 3, In., Lithosiidae 2, Hypsidae 2 n., Lasiocampidae 1, Ophideridae 4, Ommatophoridae 1, Bendidae 1, Remiigidae 1, Platydidae l, Nyctalemonidae 1, Palyadae 1, Micronidae 1, Fidonidae 1, Hazidae 3, 2n., Ze- renidae 1 n. (von den Heteroceren nur die n. sp. beschrieben). Danais n. sp. StaudingerC). — Philippinen. Semper (^) liefert ein Namenverzeichnis aller bisher auf den Inseln gefangenen Schmetterlinge und zwar Danaidae 27, Satyridae 29, Elymniidae 4, Morphidae 12, Nymphalidae 92, Libytheidae 1, Nemeobiidae 2, Lycaenidae 104, Pieridae 39, Papilionidae 26, Hesperidae 63, Sphingidae 28, Sesiidae 3, Agaristidae 10, Zygaenidae 5, Chalcosiidae 4, Nycte- meridae 8, Lithosiidae 24, Arctiidae 12, Liparidae 20, Notodontidae 8, Psy- chidae 2, Lasiocampidae 8, Saturniidae 4, Drepanulidae 1, Cossidae 5, Noctuae 130, Geometrae 56, Uraniidae 2, Siculidae 3, Pyralidae 42, Tortrices 2, Ti- neidae 6 und Pterophoridae 3. — Hestia n. , Euploea n. Staudinger (^); Syntomis n., Mydrodoxa n. Druce C-^] ; Lagoptera n. (Noctuae) Snellen (*). Vergl. auch Semper ^]. — Sumatra. H. 0. Forbes liefert Sammelberichte p 134, 137, 139, 166, 173, 177, 178, 212, 215, 227, und beschreibt als neu Trepsichrois 1 , Kallima 1 , Cethosia 1 , Cyrestis 1 , Ixias 1 : H. 6. Smith {^] ) , Amnosia 1 (H. 6. Smith [^)) und Papilio 1) (Butler (2i)) . H. G. Smith (') verzeichnet 230 sp. von Tagfaltern, gesammelt durch C. Bock, Heylaerts (*^) verzeichnet Sphingidae 1, Syntomidae 3, Cossidae 2, Limacodidae 4, Aganaidae 4, Arctiidae 5, Liparidae 6, Psychidae 2, Saturnidae 1, Lasiocampidae 1, Noctuae 27, Geometrae 7 und Pyraliden 9. Auf T. 1 in Veth's Reise sind 3 sp. abgebildet. Papilio n. H. 6. Smith (2); Papilio n. Butler (^^); Psychide n. Heylaerts (3); Potamophora u., Pinacia n. Snellen (^). — Thibet. Debis 5 n., Poujade {^, ^); Mycalesis 2 n., Satyrus 2 n., Ypthima 1 n., Poujade (2, 4, 5^ 7j. Apatura Iris ysly. n. OberthÜP (*); Araschnia n. Poujade C^); Lycaena 4 n. Poujade {^, ^, ^); Syntomis 2 n., Proeris n. sp. Poujade (^) . Australische Region. Staudinger (^) bespricht und bildet ab Callidryas 3, Hehomoia 2, Hestia 1, Ideopsis 1, Danais l, Euploea 8, Hamadryas 3, 2 n. var., Acraea 1, Cynthia 1, Messaras 1. Snellen (^) weist nach, daß die Grenzen zwischen der Indischen, Indo-malayischen und Austro-malayischen Subregion nicht so scharf sind wie Wallace glaubte; so kommt Thestias auf Celebes und Cathaemia Gabia Boisd. auf Java vor. Vergl. auch Schatz. Austro-malayische Subregion. Mohnike bemerkt, daß die Schmetter- linge gegen Osten größer und besser entwickelt sind und auf Amboina ihr Maxi- 494 Arthropoda. mum erreichen. — Amboina. Sammelbericlite liefern H. 0. Forbes (p 291, 295) und Mohnike. DoleschalUa n. sp. Distatlt (*) . — Aru. Papilio Alcidinus Butl. beschrieben und abgebildet Röber (^j. Plötz (^) beschreibt als neu Plesio- neura 1, Hesperia 4, Plastingia 1, Tagiades 2 und Isniene 1. — Biiru. Sammel- bericht (p 396) und Tenaris n. H. 0. ForbeS. — Mysore. Hamadryas n. var. Staudinger (^). — Neu Guinea. Pajnlion. var. Honrath; He&peria l n., Apaustus 2 n., Tagiades 1 n. Plötz ^]. — Timor. Sammelbericht H. 0. Forbes p 423, 459, 470. — Timorlaut. H. 0. Forbes bespricht p 303 und 325 die Schmetterlingsfauna und liefert einen Abdruck von Butlers Abhandlung [Bericht f. 1883 II p 475]. Kirsch erwähnt 4 sp. als Nachtrag zu Butlers Verzeichnis, von diesen sind Omithoptera \, Atliyma 1 und Diadema 1 var. neu. — Waigeu. Euploea n. var., Hamadryas n. var., Staudinger (^). Australo-oceanische Subr egion. Mathew [^, 4) bespricht die Lebens- weise einiger polynesischen Arten. Caroline-Insel. Butler (^) bespricht und beschreibt HypoUmnas In., Macroglossa In., Prodenia In., Remigia 1 und Ptne- cera 1 n. fPyralidae). — Ellice und Gilbert Inseln. Butler ('') und Woodford erwähnen Nymphalidae 2, Sphingidae 1, Lithosiidae 1, Noctuae 6 und Pyralidae 5, 2 n. — Neu Holland. Meyrlck C^) bestieg Australiens höchsten Berg Mt. Kosciusko, 7200', und fand, daß die alpine Fauna bei 5000' mit bei- nahe ganz neuen Formen begann ; die meisten Schmetterlinge waren Geometrae von australischen Typen; 60 n. sp. wurden gefangen ; Xenica 1 n. und Telesto 1 n. sind beschrieben. Derselbe [^) setzt seine Bearbeitung der Pyraliden fort und erwähnt Pterophoridae (7 gen., 21 sp.), Alucitide (1 gen., 1), Hydro- campidae (5 gen., 2 n., 13 4 n.), Oxychirotidae n. fam. (1 n. gen., 1 n.), Epipaschiadae (2 gen., 2 In.), Pyralididae (1 n.), Botydidae (Nachtr., 7 n.), Scopariadae (Nachtr., 1 n.) Crambidae (Nachtr., 4 n. TUnaHotia] und Phycididae (Nachtr. 1 n.) (Vergl. Bericht f. 1884 II p 523). Derselbe (^j bearbeitet in der Fortsetzung seiner Monographie der Oecophoriden die Gattungen Brachynemata (1 n.), Microbela (3 n.), Heterozyga (1 n.), Oxythecta (6, 4 n.), Crepido^celis (2 n.) und Ocystola (36, 34 n.). Rosenstock beschreibt und bespricht aus Melbourne Lycaena 1 u., Lucia In., Pamphila In., Telesto 1 n., Lithosiidae 4 (2 n.), Lipa- ridae 4 (In.), Lasiocampidae 2 (l n.), Notodontidae In., Psychidae In., Cyma- tophoridae 1, Noctuae 7 (2 n.), Geometrae 37 (7 n.), Tortricidae 3, Tineidae 22 (7 n.) und Pterophoridae 3. Heylaerts (^, ''] beschreibt Psychiden 5 n. Auf die kleinen Claremont Inseln zwischen Cape York und Cooktown fand iVJathew ^) Rho- palocera 13 (Tachyris Ada neu für Australien) und Heterocera 5 nebst einigen unbestimmten Microlepidoptera. — Neu-Seeland, Aegeria tipuliformis ein- geführt Anonymus ('). Meyriok (2) liefert ein Supplement zu den Geometriden (23 sp., 2 n., 1 n. g.). Derselbe (^, ^^) verzeichnet 77 Scopariadae, nämlich Nyctarcha 1, Scoparia 58 (45 n.), Tetraprosopus l und Xeroscopa 17 (15 n.). Derselbe (*, ^2) erwähnt von den Pyralidinen Pyralidae 1 [Pyralü farinalis L., eingeführt), Pterophoridae 11 (6 n.), Hydrocampidae 1 und Crambidae 15 (14n.). Als Nachtrag zu seiner Bearbeitung der Tortriciden bespricht und beschreibt Meyriok (^) 9 (8 n.). — Sandwich-Inseln. Anrep-Elmt bespricht die Fauna und sagt, daß die wenigen einheimischen Arten durch Einführung schnell vermehrt werden. — Thursday-Insel. Hier traf Mathew (') 48 sp. von Tagfaltern an. Nearctische Region. Staudinger (\' bespricht und bildet ab Meganostoma 1, Midea 2, Danais 1 und Argynms 1 . W. H. Edwards (1) schließt den zweiten Band seiner Schmetterlinge 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 495 Nord-Americas mit der Beschreibung und Abbildung von Papilio Rutulus Boisd. und liefert mehrere Nachträge zu den vorigen Lieferungen. Derselbe (2, 3) hat eine neue Liste und Cataloge der uearctischen Tagfalter ausgegeben, worin er 612 sp. mit 98 var. aufnimmt. Nach Hoy ('^) gehen südliche Formen weiter nördlich auf der westlichen als auf der östlichen Seite der großen Seen. Hülst (^) liefert eine kurze Übersicht der 9 sp. von Erebia ; Erebia Vesagus D. Hew. gehört zum südlichen America. Cosstis n. sp.? Kellicott (■^;. Grote(') verzeichnet die sp. von Apatela. Vergl. auch Fischer (^), Merriam, "Möschler und Packard (^) [Aplodes n. sp.). Localfaunen. Arizona. Euchaetes u. sp. Stretch. — Brit- tisch America (mit Ausnahme von Canada) . Bean, W. H. Edwards (") [Chionobas n. sp.), J. Fletcher(3), Geddes(') (aus Colgarry und Goose Lake Region) , Geddes(2) (4 sp. Nachträge; Summe 126 sp.) und Neumoegen (^) {Nemeoj}hiIa u. sp.). — Californien. Behr \^) bespricht Rhopalocera 45, Sphinges 7 und Bom- byces 28, Pyr7-7wtaenia n., Nadata n., Catocala n., TrlpJwsa 2 n. Hy. Ed- wards (3); Scepsis n., Nola n., Cisthene n. Stretch; Euperiaxs.., Atethmia n. Behr (^). — Canada. Sammelberichte liefern Bowles [Sphinx achemon VlQVl i^öiX Canada), Fernald (*) J. Fletcher C^) [Ellema HarrisHhd Ottawa), J. Fletcher (^), Fyles (-), Harrington (• — ^j^ jack, Kliman, Moffat, Reed [Aegeria acemi häufig bei London), SaunderS (^) [Papilio cresphontes jetzt überall häufig, vor 15-20 Jahren noch sehr selten in Süd-Canada, Thecla laeta Edw. beinahe ausgestorben ; Terias mexicana 1 Ex.), SaunderS (^, ') und J. B. Smith [^'^] . Nemeophila n. sp. Hy. Edwards (^); CalUmorpha n. sp., Arctian.9,^. Stretch. — Colorado. Noto- donta n. sp., Jajiassa n. var., Ichthyura n. sp. Hy. Edwards (-;; Plusia 2 n. Strecker (-). — Connecticut. Papilio Turnus selten 1885 Underwood. — Flo- rida. Victorina steleneslj. (neu für Nord- America) W. H. Edwards (^); Pamph'la n. sp. French('); Harrisina n. sp. Stretch; Botisn. sp. Fernald (•'). — Illinois. Crambiis n. sp. Fernald [^'] und S. A. Forbes (^). — Iowa. Adehcephala n. var. Neumoegen ('^). — Labrador. Packard (^) (2-3 sp.) — Maine. Fernald (^). — Massachusetts. G. Dimmock. — Michigan. Cook. — Nevada. Anarta n. sp. Behr (^). — New Hampshire. Crocota n. sp. Stretch. — New Me- xico. Papilio u. sp. Strecker ('^); Sphinx n. sp. Neumoegen [-]; Harrisina 1 n., Halemlota 1 n. Stretch. — New York. Sammelberichte liefern Düring, Fischer {^), Hamilton (Rhopalocera 5, Bombyces 5, einige Noctuen), Hulst ('), Kelllcott (■*), Lintner (') [Grapta FaunusYxdiy^., G. j'-albumB.lj., Feniseca Tarquinii/s Fahr.., Catocala imijuga Wsdk., Agrotis clandestina Haxx .) , Llntnor ('-*] und UndorWOOd. — Rocky Mountains. Oeneis bore Sehn, kommt auf diesen vor nach W. H. Edwards in Aurivillius [^). Colias n. sp. Strecker (1). — Texas: Aaron (3). Melitaea 2 u. und viele andere Arten besprochen bei E. M. Aaron & S. F. Aaron. Cisthene 1 n., Crocota 2 n., Euchaetes 1 n. Stretch; Crambiis l n., Eurycreon 1 n. Fernald (''j. — Utah. Arctia n. var. Neumoegen (^j. — Vancouver-Insel. Sammelberichte von J. Fletcher (^ ^) und Taylor (40 sp. Tagfalter sehr häufig und zahlreich). — Virginia. Cmwö?aos Boisd., Hestia /. Eryxn Fabr. in Tab.) Staudinger (^) p 48-49 — arddppus Cram. var. Nord- America; Hy. Edwards (^^), Hülst (^). Euploea Mindanensis n. Mindanao, confusa Butl. var. Waigeusensis n. Waigeu ; Staiidinger (^) p 51-52 — Bauertnaymi n. (snbg. Deragena) Kabia-Insel; Röber (^). Hestia n. sp. (ohne Beschreibung) Philippinen; Staudinger (*). Trepsiehrois vandeventeri n. Sumatra; H. 0. ForbGS. Subfamilie Neotropidae. Staudinger (^) bespricht und bildet ahLycorea Cleobaea Goät. , Hamadryas Moorei Macl., Athesis acrisione Heyf . , Itujia Lamirus hatr . , 0 ly ras Theon Bades, Eutresis Hypereia D.Hew., Aprotopos melantho Bates. Dircenna calliperoBaies, D.Epidero Bates (verschieden von D. Lmea Cram.), D. Klugii Hb., Callithoynia Hezia Hew., Ceratinia Anto7iina Feld., C. Pardalinailo'p{., C. Daeta Boisä., C. pantherina Stgr. (= var. von C.fiuonia Hew.), C. Eupompe Hb., Scada theaphia Bates, Sais zitella Hew., Mechanitis MacrinusHevf., Napeogenes Corena Hew., N. Stella Hew., Ithmnia Panamensis Bates (nicht var. von lycaste Fabr.), /. aureliana Bates, /. Anchiala Hew., /. ocalea D. Hew., 7. adelphina Bates, /. pardalis Salv., I. zavaletta Hew., /. onega Hew., I. Makrena Hew., I. patilla Hew., /. Diasia Hew., /. vicina Salv., /. rufocincta Salv., /. Oto Hew., /. libethris Feld., /. simplex Salv., Aeria agna Salv. & God., Melinaea Lucifer Bates, M. Paraiya Reak., M. Hicetas Salv. &G., M. Gazoria Godt., Tithorea Bonplandii Gu^r. und T. Tarracina »Hew.« (= T. pinthtasSsüy.&G. p 73); Sais promissa Weymer ist var. von *S'. zitella Hew., Sais mosella Hew. = var. von S. RosaUaQx&xa. ; Scada phyllodoceWo . = ?? Hetero- scada Gazoria God. ; Mechanitis Isthmia Bates = M. macrinus Hew. Q ; Mechanitis menophilus Hew. ist eine Melinaea; Napeogenes pharo Feld. = ? var. von N. sul- phurina B2iies ; Ithomia iphianassa D. Hew. ist nicht var. von /. lycaste Fabr.; I. Kezia Hew. = I. Anchiala Hew. var. ; 1. aureliana Bates, chrysodonia Bates, oncidia Bates und aureola Bates sind nicht var. von I. Orolina Hew.; /. lora Stgr. = /. Nepos Weym.; 1. canaletta Stgr. = I. canilla Hew.; Melinaea orestes Salv. und M. Hicetas sind wahrscheinlich beide varr. von M. menophilus Hew. — Schatz bildet ab die Flügelrippen etc. von Lycorea, Ituna, Tithorea, Melinaea, Methona, Athyrtis, Mechanitis, Thyridia, Eutresis, Athesis und Olyras. Srnka be- schreibt die wahre Athesis Dercyllidas Hew. (;^ und liefert eine Abbildung von Athyrtis Salvini Srn. Aeria Elodina n. Venezuela; Staudinger (^] p 70. Athesis Hewitsonii M. (= Dercyllidas Hew. (^) Süd-America ; Srnka p 121. Athyrtis mechanitis Feld. var. Oberthüri n. Ecuador; Srnka p 129 Fig. Ceratinia Porsenna n. Tabatinga, soror n. Pebas ; Srnka p 122-124 Fig. — anto- nina n. Peru, fenestrella Hew. var. Peruviana n., var.? hemimelas n. Peru, ana- stasia Bates ab. amabilis n, Brasilien und var. anastasina n. Jurimaguas; Staudin- ger (') p 59-60. Dircenna callichroma n. Ecuador Staudinger (') p 58. Eutresis hypereia D. Hew. var. dilucida n. Chiriqui, var. antioguensis n. Cauca; Staudinger (') p 57 Fig. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 499 Hamadryas zoilus Fabr. var. mysoriensis n. Mysore, assarica Cram. var. fallax n. Waigel! ; Staudinger (^) p 54. Ilhmnia üerdinoides n. (= ilerdina Hew. var. in Tab.) Pebas, lerdina n. Pebas, atha- Iwa u. Chanchamayo, Troetschi n. Columbien mit var. saturata n. Cauca, Laura n. Cauca, fausta n. Teff^, obere Amazon, Makrena Hew. var. Caucana n. Cauca, fallax n. Süd-Peru, Starkei n. Venezuela, Ladra n. Ecuador, paradoxa n., anomala n., mira n., dimidiata n., quinta n. Caucathal ; Staudinger (') p 65-70 Figg. — Honrathi w. Rio Chanchamajo, excellens n. Ecuador, trombona n., tenera n. Pebas; Srnkap 125-128 Figg. Ituna Lamirus Latr. var. cornpleta n. Chiriqui ; Staudinger (*) p 55 Fig. Lycorea pasmuntia Cram. var. concolor n. Peru ; Staudinger (^) p 55. Mechanitis doryssides n. mit var. plagifera n., Huallaga n. mit var. Jurimaguensis Jurimaguas; Staudinger [^) p 62 Figg. Melinaea /MCi/erBates var. divisa n. Jurimaguas, Hicetas Salv. &God. a.h. ßavosignata n. Pebas; Staudinger (') p 71. Napeogenes Hymettia n., Hypsaea n. Cauca, excelsa Feld. var. centralis n. Costa Rica, Iquitensis n. Iquitos ; Staudinger (') p 63 Fig. Tithorea furia n. Venezuela, Bonplandi Guer. varr. Descandollesi n. und Latreillei n. Cauca, Humboldtii Latr. v&.v . ßavomaculata n. Cauca, Susanna n. Antioquia; Staudinger (') p 72-73 Figg. — Cassandrina n. Ecuador; Srnl augusta Bates, sophonisba Gr., niarga- rita Godt., amelia Gr.; Epiphile adrasta Hew.; Myscelia cecida Hew.; orsis Dr. (^,5, cyaniris D., Hew.; Catonephele numilia Gr. (J', Q, capenas Hew.; acontius L. (^,5) Heivitsoni ¥Q\di.\ Bulboneura sylphis Bates; Temenis Laothoe Gr.; Nica sylvestris Bates; Peria laniis Gr.; Dynamine zenobia Bates, erchia Hew., gisella Hew., persis Hew., egaea F. (J*, ^ ; Callicore etipepla Salv., clymena Cr., Peri- sama patara Hew . , Oppelii hatv., Bonplandii Guev., i'öju'nÄa Hew.; Catagramtna cynosura D., Hew., Kolyma Hew., mionina Hb., hesperis Guer.; Haematera pyra- mus F.; Antigonis Felderi Bates; Callithea Buckleyi Hew., markii Hew., sapphira Hb. (^, 5, Leprieurii Feisth. ; Calliznna aceste L. ; Gynaeeia dirce L. ; Batesia rcym« Bates, hypoxanthe Salv.; Ageronia feronialj., a/tc«a Bates, amp hinome Jj . , velutina Bates, arete D., Hew.; Didonis biblis F.; Vila mariana Bates; Cystineura hypermnestra Hb., teleboas Men.; Pyrrhogyra amphira Bates, neaerea L.; Amnosia decora D. , Hew.; Lucinia cadmaDv.; Cyrestis formosa Feld., rahria Westw.; laelia Feld., elegans B.; Megalura berania Hew., coriima Latr. (J*, Q, crethon F., y?e/c«s Sulz., cores«a Godt.; Victorina steneleslj.] ep ap hus hüti'., sidpitia Cr.; Hypo- limnas Bolina L. (J', 2 > ctH'niena L. rf, Q , misippus L. (^, Q , pandarus L. (J*, Q , salmacis Dr. var., anomala Wall.; Hestina assimilis L.; [Calinaga Buddha Moore) ; Herona marathus D., Hew.; Euripus halitherses Doubl, (j^, Q; Penthema Lisarda D.; Isodema adelmaF.; Euxanthe madagascariensis Luc; Pseudacraea tarquinia Trim., Boisduvali T>.: Parthenos gambrisiiis F . war., iigrina YoW.; Lebadea alan- Ä«rae Horsf . ; Adelpha ijjhicla h., erotiaüew., mephistopheles Butl., alala Hew., cythereaJj.^ olytithia Feld., detnialba Bwtl., epione Godt., mesenti7ia Cr., Zar« Hew.: Limenitis jirocris Gv.., libnites Hew . , dudu Westw.; Pandita sinoria Feld.; Catuna crithea Dl'., coenobita F.; Xanthotaenia Busiris Westw.; Neptis vikasi YLoxsi . , helio- dora Gr., neriphus Hew., praslini B., tiga Moore, consimilis B. , agatha Gr.; Athyma nefte Gr. (J^, ^, cama Moore, leucothoe L.; Abrota mirus F.; Euphaedra ruspina Hew . , zeuxis Westw. , eupalusF., xypete Hew., zampa Westw.; Euryphene sophus F. 0^,5, cocalia F. (J^,^: Neurosigma siva Westw.; Hamanumida dae- dalus F.; Aterica afer Dr. (^, Q, rabena B., cupavia Gr.; Cymnthoe caenis Dr. Cf ) 2 ' theodota Hew. (^,5) sangaris God. (3^, § i Euthalia evelina StoU, monina F. (J*, Q, DunyaY)., Hew., phemiusD., Hew. (J*, Q, Tanaecia leucotaenia 8emp . pulasara Moore ; Symphaedra thyelia F., canescens Butl. (^, Q, aeropus L., pano- pus Feld.; Apatura namouna Doubl., chevana Moore, osteria Westw., parisatis W. cf , Q , Chandra Moore, laurentia Godt. Q^, ^ > griseldis Feld. , agathina Gr. ([iJ', Q , /lavomY Latr.; Dilipa morgianaW.; Helcyra Hemina Hew . ; Apaturina erminiaCv.; 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 503 Dichorragta nestmachus B.] Aganisthos odius ¥., Prepona giiorima Bsites, chromus Guer., praeneste Hew.; Agrias sardanapalus Bates; Meneris Tulhaghia L.; Smyrna Blornfieldia F., Pycina zamba D., Hew.; Charaxes candtope Godt., neanthes Hew., ephyra Godt., eupale Dr., baya Moore, pelias Cr., zingha Gr., lucretius Gr., atha- mas Dr., euryalus Gr., tiridates Gv . ^ eudamippus D.; Palla Varanes Cr., decius Gr.; Megistanis deucalion Feld.; Mynes caledonia Hew.; Prothoe Franckii Godt. lind Mulderi Voll. — Grandidier & Mabille liefern Abbildungen von folgenden, vielleicht theilweise neuen Arten und Formen: Atella phalantavdiv .madagascariensis ; Smerina nianoro (^,Q: Precis natalica, Goudotii, Andremiaja, Galami mit var., musa, Radama (^ , Q, \ Hypanartia borbonica; Junonia epiclelia (J^, Q; orithyia var. madagascariensis (^,Q; Salamis augustina, Anteva mit \2iX., Duprei (J^,Q; Doleschallia eurodoce (^ , § ; Crenis madagascariensis, natalensis (^, Q , am,aztda (^,Q] Hypanis ilit/tyavsiY. anvatara; Eiirytela fulgurata^ narinda; Cyrestis ele- gans ; Diadema misippus, dubia var. Drucei, glaucina, diffusa, Drucei (^, ^ , dexi- thea (^,2; Pseudacraea apakiroides; Godartia madagascariensis (^,Q '■, Neptis gratilla, diimetorum, frobenia, sakalava, kikideli; Alerica rabena; Nymphalis an- dranodorus (^, Q , betsimisaraka Q^, relatus (J^, cacuthis (J^, Q , andora (^f , Q, , antamboulau (^, Q, mit var. betanimena (^ mit var., etesippe (j^, Q, phraortes, zoippus, analava. Voth & Snellemann bilden Limenitis selenophora KoU. ab. Pseuda- craea colvillei Butl. abgebildet WaterhOUSe (^). Schilde bespricht Argynnis aphi- rape mit varr., pales mit varr., dia, Freya mit varr., polaris mit var., frigga mit var. und gibt neue Unterschiede zwischen A. aphirape und euphrosyne an. West- WOOd verzeichnet 11 sp. aus dem Matabele Land. Schilde (•^) bespricht ausführ- lich die Ähnlichkeiten und Verschiedenheiten in den Zeichniingsanlagen der Rück- seite der Hinterflügel bei Argynnis und Melitaea und erklärt die letzteren zum Theil durch die Verschiedenheit im Rippenbau, indem die Mittelzelle bei Melitaea geschlossen ist. Melitaea maracatxdica Stgr. var. saxatilis Ghr. (= persica Stgr.) Christoph ("^). — Besonders besprochen werden folgende gen. und sp. : Calinaga gehört zu den Papilioniden Lucas ('), Charaxes jasius L. Savard (^); Doleschallia Distant (*); Hestina ist eine Satyriden-Gattung Butler (^*); Hypolimnas Bolina L. (die (J* auf Fidschi einander gleich, die Q. aber sehr verschieden und theil- weise als eigene Arten beschrieben) JVJathew (•') ; Hypolimnas anomala mit varr. H. 0. Forbes p 134 ; H. misippus L. und varr. Butler P) ; Junonia almana und asterie dieselbe Art Butler [^), Swlnhoe P) ; Neptis jumbah Moore de Niceville P); Prothoe Butler ^^) und Vanessa callirhoe (steht zwischen V. cardui und atalanta) . Mühlwenzel (^). — Synonymisches. Apatura Flora nicht = Clyton W. H. Ed- wards ('); Apatura Macar Wall, verschieden von parisatis Westw. Snellen [^) ; Apatura Leilia Edw. und Antonia^^^. = Celtis Boisd. varr., Ap. Codes Lintn. = Leilia Edw. Q, E. JVJ. Aaron «& S. F. Aaron; Argynnis Meadii = nevadensis var., nevadensis Edw. Q Fig. in Vol. 1 = coronis Behr H. W. EdwardS (^); Argynnis hegemone Stand. = aphirape var., oscarus Evers. = euphrosyne var., chariclea^chn. = Localform von amathusia Schilde (^); Argynnis sipora Moore = pales W. V. var., pallescens Butl. = var. chlorodippe aus Europa Staudinger (^) ; Argynnis improba Butl. wahrscheinlich eine hochnordische Localform von frigga Thb. Aurivillius in Schöyen (^j; Catagramma amazona Bates = cynosura Hew. ^ Strecker ('^). Chlosyne paupera Feld. = Saundersi D., Hew. aberr. Staudinger (^) ; Cyrestis ganescha Koll. verschieden von C. ThyodamasB. Butler (^^); Eresia punctata Edw. (1871) = Phyciodes Tulcis Bates (1865) E. M. Aaron & S. F. Aaron; ErgoUs indica Moore =? ariadne L. de NicevillO (^) ; Hypanartia atropos Feld. = Godmanii Bates Staudinger (i); Limenitis latifasciata = Localform von Sibylla Mühlwenzel (^]; Melitaea larunda Str. = Dymas Edw., M. Boucardi God.-Salv. = Sommerform von Vesta Edw, E. M. Aaron & S. F. Aaron; PapiUo lycorias Ljungh. und Plinthus 504 Arthropoda. Ljungh. = Argynnis sehne ab. jRinaldus Herbst Lampa^ Salamis amarantha Butl. = temora Yeldi. Staudinger ('); Symhrenthia ffen^^a Moore = hippoclaQx. »casiial varietyc« [?= aberr.j de Niceville ('). Ageronia albicornis n. Staudinger [^] T 44. Agrias narcissus n., beata n., amydonius n., claudianus n.; Staudingor (') T 57 — Sahlkei n. Cayenne ; Honrath p 27S Fig. — amydon n. Pebas ; Strecker l' p 177. Amnosia eudamia n. Sumatra; Smith in H. 0. Forbes p 275. Anartia saturata n.; Staudinger (') T 39. Apatura iris L. ab. Deutschland; Steudel & Hofmann p 328 Fig. — msL. aberr. und var. Bietin. Thibet ; Oberthür (^) p 136. Araschnia Davidis n. Moupin, Thibet; Poujade (^) p 94. Argynnis pales F. var. n. Valais; FallOU (2) p 9 — pales F. var. lapponica Stgr. ab. n. Maalselven, Norwegen ; Schneider (') p 149 — pandora Schiff, var. (et ab.) paupercula n. Sicilien ; Ragusa p 271 — paphia var. anargyra n. Süd-Europa, adippe L. ab. cleodippe n. Spanien ; Kane ("^j p 73, 75 — aglaja L. ab. aberrans n. Jämtland, Schweden; Lampap 20 — selene var. Nord-Skandinavien, aglaja var. Saitenfjord, Norwegen; Schilde (^) p 98, 135 — euphrosyne vax . , selene var. Schlesien; Kittsteiner (^1 p 15 — freya ab. obscuran. Odalen, Norwegen, /n^y« ab. n. (nahe zu improba Butl.) Porsangerfjord ; Schöyen (^) p 142. Athyma evanescens n. Staudinger (^) T 51 — inarina (= inara Moore, non Doubl.) Manipur; Butler ('*) p 304 — gracilis n. Timorlaut; Kirsch p 276 Fig. Calinaga siehe Papilioninae . Catagramma excelsissima n. Staudinger (*) T 42. Cethosia carolinae n. Sumatra; H. 0. ForbeS p 274. Charaxes Chiron n. , Monteiri n.; Staudinger (*) T 58, 59 — hindia BnÜ. var.? Caicutta; de Niceville (^) p 45 — Distanti n. Malacca; Honrath p 277 — violetta n. Delagoa Bay; H. 6. Smith (2). Chlosyne Brunhilda n. Chiriqui ; Staudinger (') p 96. Colaenis Dido L. aberr.; Staudinger [^) p 86. Crenis Boisduvalii n.; Staudinger (•) T 40. Cynthia moluccarum n. Amboina (= Arsinoe Cram.), erota F. var. pallida n. Anda- manen; Staudinger (i) p 89 Fig. Cyrestis Andamanensis n.; Staudinger (^) T 45 — irmae n. Sumatra; H. 0. Forbes p 275. Diadema alimena L. var. Salvini n. Q, Timorlaut; KirSCh p 276 Fig. Doleschallia amboinensis n.; Staudinger (^) T 39 — Crameri n. (= Polibete Cram. T 235 C, D, non autem T 234 D, E) Amboina; Distant (^j p 41. Dynamine Pittheus n. , Pebana n. Staudinger (') T -12. Ectima Lirides n.; Staudinger (') T 43. Epiphile electra n.; Staudinger (') T 41. Eunica violetta n.; Staudinger (^j T 40. Eurytela Belkeri n.; Staudinger (') T 39. Euthalia Platenin., Duda n.; Staudinger (') T 53. Euxanthe Schätzt n.; Staudinger (') T 48. Gnathotriche sodalis n. Caucathal ; Staudinger (') p 95. Hypolimnas Huldeni u. Caroline Insel; Butler (') p 93 — imperialis n. Stau- dinger (1) T 47. Jnnonin orithya L. var. celebensis n. Celebes ; Staudinger (') p 98 — Swinhoei n. Mhow, Poona; Butler (^^] p 309. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 505 Kallima spiridiva n. Sumatra; H. 0. Forbes p 274, Limenitis sihylla ab. nigra n. Frankreich; Guillot p 136. Melitaea phoehe Kn. var. minor n. Schweiz; Kane (^) p 68 — albiplaga n., deßnita n. Süd-Texas; E. M. Aaron & S. F. Aaron p 175-176 — cinxia var. Guernsey; Lowe p 217 — didyma ab. Italien; PeraCCa p 24. Mynes Plateni n. Staudinger (') T 60. Neptisn. sp. Manipur; Butler (^') p 305. Phyciodes annita n. Venezuela, callonia n. Pebas mit var. murena n. Chanchamayo, niimas n., oblita n. Columbien , ahna n. Blumenau , Süd-Brasilien, fallax n. Chanchamayo, styx n. Antioquia ; Staudinger (*) p 92-94 Figg. Precis Boisduvali n. (= Andremiaja Stgr. T 38, non Boisd.) Madagascar, monroviana n. Monrovia, vetula n. Ost-Africa gegenüber Zanzibar, chloantha Gr. var. ohscurior n. Süd-Africa, octavia Cr. var. natalensis n. Natal, amestris ür. var. caffraria n. Natal; Staudinger (*) p lOO-lOl Figg. — amestris Dr. 5 var. n. Africa; Dewitz (3) p 142 Figg. Prepona miranda n.; Staudlnger (') T 56. Prothoe regalis w. Manipur; Butler {'") p 53 und (i*) p 306 Fig. — angelica n. Tenasserim, Borneo, uniformisn. patria ?; Butler (^''j p 53. Salamis anacardii 1j . var. n. Africa; Staudinger x^] p 102. Symbrenthia silana n. Bhutan, Sikkim ; de Niceville (^j p 117 Fig. Symphaedra pardalis n.\ Staudinger ('j T 54. Vanessa antiopa L. var. hygiea n. Europa; Kane (-^j p 62 — antiopa L. aberr. Simplon; FallOU (^) p 9 — c-album L. aberr. und var. Frankreich; Leprevost (1), Bayern; Schattenmann p 122 — carduiL. ab. Deutschland; Steudel & Hofmann p 328 Fig. — carduih. var. inornata (nicht beschrieben); Bramson p 4 — io L. var. sardoa n. Sardinien; Kane (^j p 61 — polychloros L. var. erythromelas n. Algerien; Austaut p 14 2 — urticaeh. ab. n. Amboise, ab. n. Basses- Alpes ; Leiievre p 158. Familie Lemoniidae. Plötz C") theilt diese Gruppe in drei »Familien«: Libytheina, Eumesiina und Erycinina. Grandidier & Mabille liefern Abbildungen von Abisara tepahi Familie Lycaenidae. Distant (^) schließt seine Bearbeitung der Lycaeniden Malaccas mit der Be- schreibung von 45 sp., 8 n., auf 13 gen. vertheilt, ab. Abgebildet sind Neomy- rina hiemalis God.-^alv.; Purlisa gigantea Di&t.; Cheritra freja F.; Neocheritra amrita Feld.; Sithon nedymond var., chitra Horsf.; Hypolycaena erylus God., etolusF., fharisUh., thecloides Feld.; Narathura centaurusY., r/^m's Feld., an- thelus Doubl., Hew., adatha Hew., atosia Hew., antimuta Feld., aroa Hew., metamuta Hew.,, amphimuta Feld., ameria Hew., anniella Hew., lycaenaria Feld., vihara Feld., inornata Feld., achelous Hew., ammon Hew.; Panchala diardi Hew., apidanus Cr. , morphina Dist. , trogon Dist. ; Amblypodia narada Horsf. ; Papula amisena Hew.; Deudorix jarbas F., domitia Hew.; Loxura atymnus Q\:. und L. Cassiopeia Dist. Grandidier & Mabille liefern Abbildungen von Lycaena hippo- crates (^, ^, telicanus, pulchra (^ , Q, darius (^, ^, emolus, artemenes, scintilla (^, Q, Smithii (^ , Q, sanguigutta, reticulum, cissus (J^, ^ mit var. aberrans (J', malathana Q, mit varr. conguensis Q^ und asopus ^ , antanossa ([j^, Q , knysna cT, Q, Lysimon mit var. mylica, atrigemmata, tintinga, leucon (^ , Q, Batikeli, tsiphana; Hypolycaena philippus (^,Q , rabe (^ , Q , mermeros (^ , ^ ^ WardiiQ, 506 Arthropoda. coeculus (^, Q , niaryna (^ , vittigera\ Sithon ceres (J^, Q] Thecla licinia (^- , ruti- lans (^ und Deudorix anta (^, Q [welche von diesen Formen neu sind, kann Ref. nicht bestimmen] . Alaena amazoula Boisd. Staudinger >/) (Fig.) ist eine Lycae- nide. Nach de Niceville (') haben die Schwänze und Anhänge der Hinterflügei keine systematische Bedeutung, sondern können bei derselben Art verschieden entwickelt sein. [Vergl. Distant (^) im Bericht f. 1884 II p 497.] Besonders be- sprochen werden: Catapoedlma huhases Hew. de Niceville (^) (Fig.); Deudorix livia Klug § Butler C-^) p 485; Neopithecops zalmora Butl. de Niceville (^); Pen- tila [undularis B. soll der Typus dieses gen. sein) Butler ("•). — Synonymisches. Amhlypodia nakula Feld. = Narathura centaurus F. (sec. sp. typ. coli. Banksi) Distant (') ; ^«s/j« Moore = Deudorix Hew. Distant(^); Catochrysops contracta Butl. = ? dimorphe Form von cnejus F. SwJnhoe (^j p 506; Chrysophanus stygianus Butl. = timeus Cr. = phlaeas L. Swinhoe (^) ; Chrysophanus hippothoe L. ist nach Butler (^') = rutilus Werneb., nach Wallengren (^; aber = chryseis Hb.; Cyaniris pseudargiolus Boisd. = lado7i Cr. Butler (^O); Lycaena gaika Trim. nicht = lysamon Godman; Lycaena alce Edw. = isola Reak. E. M. Aaron & S. F. Aaronj Lycaena aegon Auct. = argus L. LaPipa; Lycaena parva Murray = trochilus Frr. Butler (^); Nadisepa Moore = Deudorix Hew., Narathura agnis Feld, nicht = anarte Hew., Nar. hypomuta Hew. = aniphimuta Feld. Distant (^) ; Nilasera Moore = Narathura Moore , Satadra Moore = Panchala Moore , Sithon chitra Horsf . = ? aS'. nedymond Cr. 2 Distant (*); Thecla huniidi Harr. = melinus Hb., Thecla siva Edw. = Ble- nina Hew. E. M. Aaron & S. F. Aaron ; Vadehra Moore = Deudorix Hew. Castalius chota n. Poona; Swinhoe (^) p 133. Catochrysops theseus n. Bombay, nicola n. Poona; Swinhoe (^) p 131-132 Fig. — Bengalia n. Calcutta ; de NicevillO (-) p 47. Chrysophanus sp. Afganistan; Swinhoe (^) p 341. Deudorix segueira n. Malacca , titimuiis n. [= phaeretina Bntl. , non Hew.) Penang, Barthema n. (= xenophon Hew., non Fabr. = Myrina megistia Butl., non Hew.) Malacca: Distant (i)p 278-280 Figg. lolaus silarus n. Delagoa Bay ; Druce (•') p 154. Iraota Boswelliana n. Malacca; DIstant (*) p 258 Fig. Lucia pyrodiscusxx. Melbourne; RosenstOCk p 377. Lycaena maerens n. [?] Melbourne; RosenstOCk p 377 — Davidi n. Moupin, Thibet; Poujade (2) p 135 — patagon. Patagonien; Mabille (^) p 56 — alexis va.r. England; Barrett (*) p 125 — ario7iides n. Amur; Snellen [^] — gigantea n. Utsch - Kurgan , atra n. , timida n. Woadilj , magnißca n. Kitschi-Karamuk; Grumm-GrshimailO p 215, 217 Not. 4, 7, p 232 — theophrastus F. var. rosacea n. Algerien; Austaut (^) p 141 — icarus Rott. ab. Q blau Frankreich ; BrOWn (') p 72 — icartis Rott. var. Schottland; Goldthwaite & Rose p 133 — opalina n. Moupin, Thibet ; Poujade (^) p 143 — marginata n. , thibetensis n. Thibet; Poujade {'■') p 151 — minimus Fueßl. var. alsoides n. Schweiz; Kane (^) p 50 — amanda 8c\m. ab. argenteam. Stockholm; Lampa p 14 — lochias n. Mata- bele Land; Westwood p 352. Megisha gunga n. Poona; SwJnhoe ('^) p 133 Fig. Nacaduba Hampsoni u. Nilghiri Hills; de Nlceville (^j p 118 Fig. — sp. Sikkim ; de Niceville (') p 3. Narathura Max w ein n., Farguhari u. [= eumolphus Bwil., non Cr.), Kurzin. Ma- lacca; Distant (') p 263-268 Figg. Neocheritra n. Typus Myrina amritra Feld.: Distant (') p 252 — theodora n. Elo- pura, Neu-Borneo ; Druce (^) p 155. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 507 Panchala singhapura n. Singapore ; Distant (') p 273 Fig. Polyommatus phlaeas L. var. England ; Lusby p 23 — amphidamas Esp. ab. obscura n. Nord-Schweden; Lampapl3 — rt/a)j/iron ab. Carlsbad ; Becher p 77 -- phlaeas L. var. americanus Urb. ab. n, Norwegen; Schöyen (^j p 142. Purlisa n. Typus lolaus ffipanteus B'iat.; Distant (') p 249. Satadra bupola Hew. var. Sikkim ; de Niceville (') P 4 — singla n. Sikkim ; de Niceville (3)p 119 Fig. Spindasis dymenus n. Camarun ; DrUCe (•*) p 155. Thecla ntphon varr. Canada ; Fletcher (^) p 35. Theorema titania n. Costa Rica; Strecker (') p 176. Zeritis amanga n. Gwailo River; Süd-Africa ; WestwOOd p 351. Zizeramora n. Kurracliee : Swinhoe (^) p 506 Fig. — ossan. Poona; Swinhoe (^j p 132 Fig. Familie Papilionidae. Subfamilie P i e r i n a e . Schatz nimmt folgende Gattungen an und bildet ihre Flügelrippen und andere wichtige Kennzeichen ab : SigxStgv., Pseudopontia Flötz, DismorphiaWn., Lexico- phasia Steph. , Eiicheira Westw., Pereute H.-S., Archonias Hb., Deltas Hb., Pieris Sehr., AporiaWh., Synchloe Wa . , Perrhybris Ylh., Leptophobia BnÜ., Neophasia Behr, Belenois Hb., Mylothris Hb., Herpaenia Butl., Pn'onem Wall., Tachyris Wall., Hesperocharis Feld., Elodina Feld., Daptonoura Butl., Pontia F., Leucidia Doubl., Eurema Hb., Eronia Hb., Catopsilia Hb., Gonopteryx Leach, Krikogonia Reak., Dercas Boisd., Colias F., Meganostoma Reak., Nathalis Boisd., Phulia H.-S., JfVf/ea H.-S., Anthocharis ^oisdi., Phyllocharis n. Schatz, Zegris Ra,mh., Teracolus Swains., Idmais Boisd., Callosune Donhl., Eroessa Doubl., HebomoiaWa., Ixias Hb. Staudinger (') bespricht im Text Callidryas 5, Deltas 2, Kricogonia 3, Gonepteryx 4, Dercas 2, Meganostoma 3, Colias 7, Hebomoia 4, Ixias 4, Idmais 11, Teracolus 2, Callosune 12, Nathalis 3, Eroessa 1, Phulia 1 und Midea 1; dazu erwähnt er kurz zahlreiche andere sp. [vergl. Bericht f. 1884 Hp 499]. Von Grandidier & Mabille werden folgende [theilweise neue ?] sp. abgebildet: Pontia alcesta var. Dorothea; Terias pulchella (J^,Q mit var. zoe Q ,ßoricola (;^,Q und var., Desjardinsii (^, Q. und var., Boisduvaliani (^, Q , hapale (J^, Q ; Pieris phileris (^, Q. , helcida (J^ , Q. und var., antsihanaka, afßnis , agrippina (J', Q, coniata cf ,Q, eriphia^ mesentina, Grandidieri (^,Q., Smithii (J^,Q, hellica, creona (J^ , ^ , saba <^, Q mit varr. epaphia (J', ^ Vind ßavida (^,2; Eronia Lucasii ^1 Q und var. Q , Buquetii (J^jQ , Grandidieri (^,2 ; Callidryas rufosparsa (^, thauruma (^ , Q. , ßorella (J^, 2 ! Teracolus mananhari (^f, Q , protomedia (J^, ßavi- dus (J*, Q ; Anthocaris zoe (j^, Q und var. Q , ena <^, Guenei (^ , Q und var. Q. , evanthe (^,^, daira, siga, eticheria (j^; Idmais haltmede (^, Q, , dynamene (J^, Q und philamene. Distant (^) bespricht die Charactere der Unterfamilie , gibt eine Übersicht der 12 gen., 2 n. aus Malacca und liefert Abbildungen von: Leptosia xiphiaF.; Delias dione Dr., pai'thenopeWsiW., nmw« Wall., tVAj'e/a Butl., hyparete war . metareteBüÜ., singhapura^ SiW.. , orpAneWall.; Prioneris clemantheXiovihX.; Catopsilia crocale Cr., catilla Cr., Scylla L., chryseis Dr.; Udaiana cynis Hew., Ih-ias tilaha Horsf. , hecabe L., san Horsf., vallivolans Butl., senna Feld., harina Horsf. ; Der- cas gobrias Hew.; Ixias Birdi Dist.; Appias nero F. (J^, Q, hippo Cr. (J', Q, , leis Hb., leptis var. plana Butl., amalia Voll., andersoni Dist., cardena Hew.; Saletara naMaZta Feld. ; Hebomoia glaucippe \j.\ Nepheronia lutescens Bui\. und hippiaY. var. gaea Feld. Christoph ^) bildet Pieris iranica Bien. ab. Veth & Snelleman liefern 6 Figuren von Terias Hecabe und varr. — Besonders besprochen werden : 508 Arthropoda. nordamericanische Coliasarien W. H. Edwards i^] und J. B. Smith (®); Colias philodice Harrington (^); Colias Keeivaydin aus Eiern von C. eurytheme typ. Flet- Cher C'); Colias Helichta Led. gute Art Swinhoe (^); Delias Belladonna F. (Do- novans Figur ist ein (^ und von D. Horsßeldii Gray verschieden) Butler (•"'); Delias ithiela Butl. (das typ. Ex. aus Darjeeling, nicht aus Penang) Butler (^^); Gonepteryx r/iamnih. und nepalensis Butler (**); Hiposcritia makana Moore ^ be- schrieben Butler {"); Hiposcr. narendra Moore § beschrieben SwJnhoe i^]\ Huphina zeuxippe Gr., H. cassida F. (^, Q. besprochen SwInhoe (^j ; Kricogonia fantusia Butl. besprochen E. M. Aaron & S. F. Aaron; Nepheronia gaea Feld., iV. /lippiaF. Swinhoe (^); Pieris teutoniaY. mit varr. Mathew (^) ; Pontia Mannii Mayer nicht von Ganoris rapae L. zu trennen Swinhoe (^); Teracolus suhfasciatus Swains. Q beschrieben WestwOOd p 336; Teracolus pseudevanthe Butl., eucharis F. und titea Godt. sind Saisonformen einer Art Swinhoe (^) ; Teracolus coelestis Sw., acaste Kl. Butler (^); Terias hecabeoides Men. und aesiope Men. SwinhOO (^) ; 7en«s Äem5e L., Zaete Boisd. de Niceville (^). — Synonymisches. Callidryas Sennae = Euhule L. E. M. AarOn & S. F. AarOn ; CatopsiUa ßorella F., aleurona Butl., hyhlaea Boisd. und pyrene Swains. sind dieselbe Art Butler (^); Callosune theopompe Feld. = polycaste Boisd. = acaste Klug = evippe Cr. = eupompe Klug, eborea Cr. = dana'e F., erone Angas = speciosa Wallengr. = ione God.; Colias pyr- rothea Hb. = Lesbia F. var., Fieldii Men. = c^a F. var. Distant (^); Aem cleone D., H. var. Stgr. = ? Smithii Kirb., Scalidoneura herminaBwil. = Co/ms e«a;an^Äe Feld. Staudinger (^); Tem- coZ«s carnifer Butl. = ? dynamine Klug var. Butler (^) ; Teracolus phoenius Butl. = eboreoides Butl. = (ZiVws Butl. = f/w/m Butl., T. jöwrMs Butl. = etrida Boisd., far- rinus Butl. = pernotatus Butl. Swinhoe (^). ! Anthocharis cardaminesL. var. England; Robson {^) p 92 — Pechin. Algerien; Baker (') p 241 und Staudinger (^j p ii. Ajypias enarete Boisd. var. n., leis Hb. 3 var. n. Q Malacca ; Distant (') p 312- 313 Figg. — Andersonin. Perak; Distant (2) p 146 — ares n. Poona; Swin- hoe (2) p 138. Belenois leucogyne n. Aden; Butler C-^) p 492. Callidryas scylla L. var. asaema n. Celebes ; Staudinger (M p 39 Figg. — Stoain- sonii n. nom. [= ßorella Boisd. = /jyrene Swains . , non L.) Africa; WestwOOd p 335. Callosune inortiata n . , regina n., Buxtoni n., pseudetrida n. Tati Fluß, Wallengrenii n., ramaquebana n. Matabele Land; WestWOOd p 338-341 Figg. — jalone Butl. var. natalensis n. Natal ; Staudinger (^) p 44. CatopsiUa Heeran. Poona; SwinhoO (^j p 140. Colias n. sp. Rocky Mountains: Geddes (^j — elis n. Rocky Mountains; Strecker (1) p 24 — hyale L, var. England; Weir (i) — hyale L. ab. n. Wolga; Stand- fuSS (*) p 3 — hyale vsiY., edusawa.!'., erate vsir. Sarepta; Becker (*) p 175 — Werdandi Zeit. ab. Q sidphurea n., ab. immaculata n. (^, ab. Christiernssonii n. Lapland ; Lampa p 10, 11 — heda Lef. ab. Sandahli Q Lapland ; Lampa p 1 1 — CÄn's/ojjÄi n. Artscha-Basch, Äomanon n. Dschekaindy ; Grumm-GrshimailO p 220 uota 11, p 229 nota 16 — aurorina var. Libanotica Led. ab. n. Persien; Christoph (^) p 20l Fig. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 509 Delias Hearseyi n. Barrackpoore, Baylein. Darjiling; Butler (•'^) p 58. Gonepteryx rhamnilj. var. England; WestwOOd & Mc Lachlan p 24 — carnipennis n. Kali-Thal, maxima n. Nikko, Japan, Nord-China, antonian. Tabov, Syrien ; Butler(8)p 407-408. Hehomoia glaucippe L. var. Roepstorfii n. Andamanen ; Staudinger (') p 41. Hiposcritia shiva XL. Poona ; Swinhoe P) p 138 — argyridina n. Manipur ; Butler (11) p 340. Huphina pallidan. Poona; Swinhoe P) p 137. Ixias meridionalis n. Poona, cumballan., colabau., jhodaw. Bombay; Swinhoe (^) p 14 0-142 Figg. — flavipennis n. Sumatra; Smith in H. 0. Forbes p 275. Phyllocharis n. Typus tagis Hb.; Schatz T 8. Pieris ergane Hb. var. n. Griechenland; Kane (^) p 7 — Kühnin. Kabia Insel; RÖber (^) p 20 Figg. — helUca L, var. n. Kilima-njaro ; Godman p 539 — napili. II gen. napaeae Esp. ab. sulphurea n. Norwegen; Schöyen (■') p 140 — napili. var. Schlesien; Kittstelner ('-) p 15. Saletara n. Typus Pieris nathalia Feld.; Distant (') p 316. Teracolus Swinhoeiu. Aden; Butler [^) p 491. Terias hecabe L. var., Sari B.ovd . varr., pumilaris Butl. var. Malacca ; Distant (i) p 304-306 Figg. — curiosa n. Kurrachee ; Swinhoe (i) p 508 Fig. — sendi n. Seruli Fluß; WestwOod p 342 — heliophila n. Manipur; Butler (i') p 338 Fig. Udaiana n. Typus Pieris cynis Hew.; Distant (i) p 301 — Pryeri n. Borneo ; Distant (') p 3ol nota. Subfamilie Papilioninae. Schatz erkennt die folgenden gen. an und liefert Figuren zn ihren wiclitigsten Characteren: Druryia Axvciy.., OrnithopteraBohd., Papilio h., Teinopalpus Ii.O]^e, Lep tocircus Swsäns., Parnassius Latr., Eurycus Boisd., EuryadesY^Xd., Doritis Fabr., Hypermnestra M^n., Thais Fabr., Luehdorßa Crüg., Sericinus Westw. und Armandia Blanch. Distant (i) vertheilt die Formen der Malayischen Halbinsel auf 2 gen., Papilio und Leptocircus. von denen er die erstere jedoch in 2 subgen. theilt: Ornithoptera (4 sp.) und Papilio s. str. (32 sp.); abgebildet sind Ornitho- ptera rhadamanthus Boisd. (^, Q , hephaestus (^, Q. mit var. rußcollis Butl. ^ > ruflcollis Butl. (^ et 9 Vera, Brookeana Wall, cf, Q; Papilio erebus Wall, cfj^ varuna White cf , $, neptunus Guer. cf, Q, Doubledayi Wall. Q, aristolochiae F. var. diphilus Esp., Brama Guör. (^, agenor L. Q, Esperi Bntl. 0^,$, mestor Hb. cf, Q, achates Cr. cfj^, helenush. (^f, iswara White ^f, $, prexaspes Feld, (j^, nephelus var. Saturnus Guer. cf , 2 » polytes L. (J^, 3 §, demolion Cr. Q^, erithonius Cr. var. malayanus Butl., Butleri Jans. (;j^, Q, caunus Westw. var. aegialus Dist. (J', e/y/m L. (J', ompape Moore, ZJe^esser^w Guer. (J', leticothoeWeat:w. Cf,5' antiphaies 6y. var. pompiliusY. (^, sarpedonlj., ei^emon Boisd., telephus Feld., bathycles Zinck-Som. (J*, arycles Boisd. ^ agamemnon L. GrandldJer & Ma- bille liefern Abbildungen von folgendem sp. aus Madagascar: Papilio Anterior Dr. Cf, $, cyrnus, demoleus, evombar, endochus, menestheus, disparilis Q^, epiphorbas Cf: 2' phorbanta cf, $, oribazus 0^,Q, Lalandei cf , Q , mangora (j^, § und meriones (^, Q. . Hy. Edwards (^) und J. B. Smith (^j besprechen W. H. Edwards' Ansichten über die nordamericanischen Arten der JfacÄaongruppe. — Specielle Be- merkungen findet man über: Calinaga Moore und Davidina Oberth. (sind Papilio- niden) LucaS (i) ; Ornithoptera Tithonus de Haan Q OberthÜr (^) ; Orn. Pronomus Mathew (i); Papilio alcidinus Butl. (f,^ RÖber (^) (Fig.); P. anac^Ms Mathew (i); P. ^«^monV Oberth. [$ trimorph, nicht monomorph) Kheil; P. antiphates Cr. und Verwandte, P. erebus Wall. Q beschrieben Distant (') (Fig.); P. Forbesi 510 Arthropoda. Smith beschrieben H. 0. Forbes; P. Polyxenes Dr. [(^ und Q auf Cuba einander gleich (= forma typ.), in Central-America verschieden (= var. asteroides)] Neu- moegen {^) ; P. rhetenor de Niceviile. Pamassius Jacquemontii Boisd., actius Evers. und Rhodius Honr. bezüglich ihre Unterschiede besprochen Honrath. — Synonymisches. Ornithoptera Thomsoni Bates = Rhadamanthus Boisd. var., Om. ruficollis Butl. Q. (non (^] = hephaestus Feld. Q var. Distant ('); Papilio casy- apa Moore = dissimilis L. var. de Niceville (^); P. Jason var. evetnonides Honr. = Telephus Feld. Distant ('); P. uranusWeym. = nephelus Boisd. var. Honrath. Calinaga Brahma n. Manipur ; Butler (*') p 309. Deichina Thermodusa n. Matheran; Swinhoe {'^) p 146. Ornithoptera Haliphron Boisd. var. Bauermanni n. Kabia Insel ; Röber (^) p 19 — Riedeli n. Timorlaut; KirSCh p 275 (Fig.) — hephaestus Feld. var. n. Malacca, ruficollis B\\i\. var. n. Malacca; Distatlt (') p. 328-329 Figg. Papilio podalirius L. aberr . n. Deutschland ; Röber (^) p 3 — machaon L. var. Bayern; Schattenmann p 123 — machaon h. var. aurantiaca m. Paris, Corsica, Sicilien ; Kane (^) P 2 — machaon L. ab. Christiania ; Schöyen (^) p 139 — brontes n. Kilima-njaro ; Godman p 540 — alholineatus n. Borneo; H. 0. Forbes p 275 • — itamputiu. Sumatra; Butler in H. 0. Forbes p 276 — danisepa n. Manipur, velu- tinus n Sumatra, cacharensis u. Manipur; Butler ('^) p 343, 344 — Sy corax u. Sumatra; H. 6. Smith (^] p 247 — nezahualcoyotl u. Nord-Mexico, Cleombrotus n. Obere Amazon; Strecker (^) p 174-175 — Rutulus Boisd. var. Arizonensis n. Arizona; W. H. Edwards (^) Figg. — cypraeaßla Butl. var. Mechowiana Angola; Dewitz (2) p 305 — phoenix n. sp. aut var., cilix n. sp. aut var., saturnus Gudr. var. n., mecisteusu. Malacca; Distant (') p 340, 345, 361 Figg. — albinus Wa\\. var. sekarensis n. Neu-Guinea, isidorus Doubl, var. leucostictus w. Columbien ; Honrath p 275, 276. Pamassius Bretneri Feld. var. Graeseri n. Sibirien, Nordmanni Men. var. minima Daghestan, mnemosyne L. ab. § melaina n. Kärnthen, Stubbendorfö M6n. ab. Q melanophia n. Nikolajewsk, Sibirien; Honrath p 272-274 (Figg.) — Romanovi n. Dschirge, caesarn. Kisil-Art; Grumm-Grshimalio p 236, 247 — apolloh. ab. Deutschland; Steudel & Hofmann p 328 Fig. Zetides acheron n. Nordost-Bengalen; Moore (•^) p 120. Familie Hesperidae. Folgende sp. aus Madagascar werden von Grandidier & Mabille abgebildet: Ismene ratek, ramanatek, Pansa, fervida, arbogastes; Systole amygdalis (^, 5; Trapezites paroechus (^,Q, empyreus (J^,^, carmides ^, catocalinus ^, malchus (J^,^, Hova, Gillias, Jfastuosus; Cyclopides mirza, cariate, Bernieri, malgacha, pardalinus, dispar(^,Q; Proteides Bozeae; Pardalesdes ariel (^, Q; Pamphila coroller, albigutta, sinnis (^, ^ , marchalii, mathias (^, Q , borbonica, gemella ; Acleros leucopyga\ Eagris sabadius (J^, Q ; Tagiades insularis Q(^,§; Plesioneura Htimbloti: Gegenes Poutieri mit var. — Hesperia latoia Hew =? callineura Feld. de Niceville (■*); Pamphila Hiiron Edw. = campestris Boisd., vitellius Smith- Abbot (non Fabr., Hübn.) = loioa Scudd. E. M. Aaron & S. F. Aaron. Plötz (^ '') bear- beitet synoptiscli die Gattungen Sapaea PI. 3 sp. und Leucochitonea Wallengr. 12 (15) sp. Antigonus sezendis n. Ceylon; PlÖtz (^) p 230. Apaustus argyropila n. Aburi; Plötz (^) p 156 — sinhalus n. Ceylon, Tanus n., 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. SU Dschilusu. Neu-Guinea, colastus n. Delagoa Bay, al/urus n. Celebes; Plötz (^) p 228-229 — ? discreta n. Indien ; Plötz {^) p 232. Gomalia litoralis n. Kurrachee; Swinhoe (i) p 513 Fig. Halpe sitala n. Ootacamund , South-India, kumara n. Sikkim; de Niceville (^) p 121 Fig. Hesperia Maykora u., Dobboe n., Warna n. An\, sekara n. lÜan-Gwmea, taprobanes n. Ceylon, eburus n. Malacca, seiva u. Celebes, «re/W n. Arn, Daendeli n. Java, Beraka n. Celebes, kolantus n., saruna n. Indien, Dschaka w. Batavia, tessellata Feld. var. n. Celebes; Plötz [">) p 225-228, 232. Ismene radiosa n. Celebes, salanga n. Arn; Plötz (^) p 232. Isoteinon melania n. Malacca; PlÖtz (^) p 230 — panditan., flavipennis n. Sikkim; de Niceville (3) p 121-122 Figg. — flexilis n. Poona; Swinhoe P) p 147 Fig. Pamphila ranoha n., harona n. Victoria-Fall; WestwOOd p 353 — lascinia n. Melbourne; Rosenstock p 378 Fig. — myus n. Florida; French (') p 33. Plastingianoemin. Sikkim; de Niceville {^) p 120 Fig. — Kobros n. Arn; Plötz ['•>) p 228. Plesioneura Queda n. Malacca, Zaiviw. Celebes, Wokanau. Arn: Plötz (^) p 225 — nigricans n. Sikkim; de Niceville (3) p 123 Fig. Proteides Lankae n. Ceylon ; PlÖtZ ('•) p 225. Pyrgus evanidus Butl. var. adenensis n. Aden ; Butler (^) p 493. Syrichtus Fritillum Hb. var. Speyeri w. Kane (ä) p 140. Tagiades utanus u. Malacca, Neiran. Arn, Kowaiau. Neu-Guinea, menanlon. Ma- lacca, editus n. Arn, area n. Bengalen, Celebes, Kirmanan. Malacca; Plötz (^) p 230-231 — trichoneura Feld. var. n. Malacca, celebica Feld. var. n. Celebes; Plötz (5) p 232. Telesto sangira VL. Celebes; PlÖtz ('') p 230 — drachmophora n. Mt. Kosciusko, Australien; Meyrick C^) p 82 — scepticalisw. Melbourne; RosenstOCk p 379 Fig. Thanaos Ihora n., Kali u. Sikkim; de Nicevüle (=^) p 122-123 Figg. Thymelicus Talantus n. Celebes; Plötz ('') p 230 — macra n. Nord- America ; Plötz (2) p 284. Heterocera. Plötz (^) theilt dieselben in 1 1 Abtheilungen : 1 . Teredinae (Castuiina, Hepia- lina, Cossina, Sesiina, Cocytina), 2. Sphingidae (Sphiugina, Thyridina), 3. Bomby- cidae mit 18 Gruppen und 38 Familien, 4. Noctuidae, 5. Uranidae, 0. Geome- tridae, 7.Siculidae, 8.Alucitidae, 9.Pyralidae, 10. Tortricidae und ll.Tineidae. Familie Sphingidae. J. B. Smith (^) bespricht die nordamericanischen Formen dieser Familie, theilt sie in 3 Gruppen : Macroglossae, Sphinginae, Smerinthinae, und liefert eine synop- tische Tabelle der gen.; Daremma, Diludia, Phlegethontius, Dolba und Hyloicuf, = Sphinx ; Lepisesia und Euproserpinus = Pagocolon [Pterogon] ; Cautethia steht den Sphinges genuinae, nicht aber den Macroglossen nahe; Argeus = Pkilampelus\ Ampelophaga versicolor ist eine Darapsa ; Arctonotus, Ellenia und vielleicht auch Exedrium Grt. gehören zu den Smerinthinen ; Calasymbolus Grt. = Smerinthus. Swinhoe ('^) bespricht 25 sp. aus Deccan. Acherontia Atropos L. Hamet (Fig.); Smerinthus excoecatus und myops SaunderS [^) (Figg.) ; Smerinthus tiliae Savard ('^j ; Sm. Cablei beschrieben Pearce. Cephonodes Cunninghami kaum von Hylas L. verschieden Butler (^) , Choerocampa andamensis, Acherontia sculda, Nephele cha- roba und N. infernalis abgebildet WaterhOUSe (^). 512 Arthropoda. Ambuly X ochracea\i. Nikko ; Butler (^) p 113. Choerocampa virgo n. Matabele Land ; Westwood p 354 — stipularis \\. Chamau ; Swinhoe (^) p 34 6 Fig. Deilephila euphorhiae L. var. Grentzenbergi n. Corsica ; Staudinger ('^) p 10 — Kmnarovi n. Achal-Tekke ; Christoph [^] p 169 Fig. Macroglossa cinerascens n. Caroline Insel ; Butler (') p 94. Sataspes Rihhei u. Celebes ; Röber (^) p 29 Fig. Sphinx pinastri L. ab. fasciataw. Schweden; Lampa p 26 — separatus n. Nord- Mexico; Neumoegen (2) p 92 — Panoquiren. Argentinische Republik ; Berg (2) p 266 — convolvuli \j. var. n. Schlesien; Thorwarth p 20 — constricta n. Kashiwagi; Butler (^j p 113. Familie Sesidae (Aegeriadae). Melittia grande Streck. ? = gloriosa Hy. Edw. nach Hy. Edwards (^) p 49. Sesia cruentata Mann. Q. wird beschrieben und abgebildet von Ragusa. Pyrrhotaenia Elda n. Californien (? = Behretisn 2^)i Hy. Edward S (^1 p 49. Scoliomima \x. insignis n. Borneo ; Butler in Pryer (^) p 370-371 Fig. Sesia aurifera n. Caucasien, ichneumoniformis F. var. Caucasus ; RomanOff p 1 1 6 Figg. Familie Uraniidae. Pagenstecher (i) erwähnt l sp. aus Nias. Familie Callidulidae. Cleosiris fasciata Moore abgebildet Waterhouse (*) . Callidula petavia Gram. var. niasica n. Nias; Pagenstecher (*) p 7. Familie Agaristidae. Pagenstecher (^) bildet Eusemia molUs Walk. ab. Swinhoe (^) erwähnt 3 sp. aus Deccan. Eusemia vetula Hb. var. n. Nias; Pagenstecher (*) p 8 — opheltes n. Birma ; DrUCe ('-) p 518 — adulatrix n. Tati Fluß Fig., niveosparsa n. Camarun, aemu- latrix n. patria?, meretrix n. Süd-Africa, nugatrix n. Cap Palmas, glossatrix n. Südwest-Africa ; Westwood p 355, 356. Familie Zygaenidae (incl. Syntomidae). Plötz (^) hat folgende »Familien« : Heterogynina, Thymaridina, Pyromorphina, Gynautocerina, Zygaenina, Syntomina und Glaucopina. J. B. Smith (') bespricht ausführlich die Structurverhältnisse und Verwandtschaften der nordamericanischen Formen und theilt sie auf folgende Weise ein: Zygaenidae (sens. str. ) : fehlen in Nord- America ; Syntomoideae : Didasys Gr., Cosmosotna Hh . . Syniomeida Hsivr., Anatolmis Pack., Lycomorpha Harr, und wahrscheinlich auch Horama Hb. und Laemocharis H.-S.; Pyromorphidae : Pyromorpha H.-S., Harrisina Pack, und Trip rocris Gr.; Ctenuchidae : Ctenucha Kirb., Scepsis Y^aXk.; Alypiidae : Alypia Hb., Psychmnorpha Harr., Pseudalypia Hy. Edw. und ? Edwardsia Neum. Eudryas 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 513 ist ein Notodontidengenus. ■ — Syntomis düatata Snell. abgebildet bei Pagen- stecher (^), Zygaena Eckt Chr. bei Christoph (^). Zygaena caniiotica var. hedysari Hb. = virginea 0. Müll., Dysauxes zu brauchen statt NacUa Boisd. Rogenhofer ('). Zygaena arctica Sehn. = Mannii H.-Sch. nach Lampa. Charidea mariamne n. Columbien ; Druce (^j p 519 Fig. Debos n. iratus w. Deccan; Swinhoe (^j p 291 Fig. Eressa musa n. Bombay; Swinhoe (') p 290 Fig. Eucteniaw. sp. Matabele Land ; WestwOOd p 354, Harrisina australis n. Florida, metallica n. Nord-Mexico; Stretch p 102. Lycomorpha notha n., sinuata n. Mexico; Hy. Edwards (''' p 128. Mydrodoxa Semperi \\. Philippinen; DrUCe [-) p 519 Fig. Procris translucida n. Thibet; Poujade i}) p 136. Scepsis Wrightiiu. Süd-Californien ; Stretch p 101. Syntomis Blanchardi n., Davidi n. Thibet; Poujade (^) p 136 — geonw. Philip- pinen; Druce (^j p 519 Fig. — alUfrontalis n., "f Lasara n. Nias ; Pagenstecher (') p 13 Figg. — Ribbein., gracilis n. Celebes ; Röber C^) p 29-:iO Figg. Uroilus ruficollis n., modesta u., imitata w. Guatemala: DruCe ') p 3!) Fig. Zygaena eudaemon n., mauretanica \\. Algerien; Mabiile ('^; p 57 — Wagnerin. Nizza; Milliere (^) p 92 — /fn/o^M var. Schlesien ; Thorwarth (2) p 20 — hippo- crepidis ab. n. Frankreich: Delahaye, Goossens & Poujade. Familie Chalcosiidae. Nach Druce (') ist diese Familie in America nur durch das gen. Gingla 3 sp.. 1 n. vertreten ; Gingla radialis Walk, wird abgebildet. H. 0. Forbes bespricht das bisher unbekannte Q von Atnesiajuvenis. Pagenstecher (') verzeichnet 8 sp. aus Nias und bildet Chalcosia glauca Walk. ab. Heterusia dividata Snell. = Scor- dylia *S'a/t'mt Butl., Dr.; Snellen C^). Amesra hyala n. Darjeeling; Druce ("^) p 518. Callamesia n. Typus Epyrgis midama H.-Sch.; Butler (") p 34 5. Chalcosia pieridoides U.-^ch. var. n., distincta Walk. var. n. Nias; Pagenstecher (') p 8, 9 Fig. Devanica bicolor n. Cachar ; Moore (^j p 235. Erasmia Loja n. Nias; Pagenstecher (') p H Fig. Gingla j'osialis n. Guatemala, tortricalis n. Costa Rica ; Druce (') p 120 Figg. Pidorusßavofasciatus n. Nias; Pagenstecher (^) p 12 Fig. Familie Himantopteridae. Butler (^) bespricht Doratopteryx Rog. und ihre Unterschiede von Pednptila Butl.; er rechnet diese gen. zu den Chalcosiiden. Pedoptila n., iiemopteridia n. Cape Coast, West-Africa ; Butler ('J p 341 Fig. Familie Nychthemeridae. Pagenstecher (') bespricht iVyc/i/Äemem lacticinia Cr. und latistriga Walk.; nach ihm ist Nychthemera cydippe Weym. = pallens Voll. var. , Leptosoma consobrina HopflF. = inconstans Voll. ^ und Leptosoma nigrovenosa Moore und meluneura ßutl. = coleta Cr. varr. Butler ("; bespricht die richtige Stellung des gen. Pterothysanus Zool. Jahresbericht. 1S85. II. 33 514 ' Arthropoda. (bei Epicopeia oder in Nychthemeridae) . Nychthemera inconstans Voll. = latistriga Walk., Butl. nach Snellen («) p 39. Pterothysanus atratus n. Manipnr; Butler (^^) p 346 Fig. Familie Lithosiidae. Plötz C'j tbeilt diese Familie in 3 Familien: Josiina, Lithosina und Aganaina. Druce (^) hat ebenso 3 Familien aus Central- America : Lithosiidae (34 gen., 86 sp., 48 n.), Melameridae (24 gen., 54 sp., 16 n.) und Dioptidae (5 gen., 20 sp., 14 n.); er liefert Abbildungen von Chrysocale magnißcaVfa\k., Tuina cingulata Walk., Odozana ßoccosa Walk., Brycea disjunctaY^s\k.., Ruscino latifasciata Butl., Eudule con/ormis Wsdk.; Melameridae: 07-icia tnmcata WaXk.^ Ephialtias enoides Boisd., Flavinia intercepta Walk., Nelo chrysomela Butl. und Euagra jalifa Boisd. Snellen (') bespricht das gen. Teinopyga (= Shma Walk.) und seine Verwandten Earias . Halias etc. Pagenstecher (^) verzeichnet aus Nias Aganaidae 4 und Lithosiidae 16. Wallengren (') beschreibt aus Skandinavien von Lithosiidae (s. str.) S gen., 17 sp. und stellt 2 n. gen. auf. — Synonymisches. Driice (^) gibt folgende Synonyma: Eucheliajenna Boisd, = Brycea dlsj'tmctaWaXk., Ruscino menea Walk., non Dr. = arctifascia Butl., Doracis coracina Boisd. = Ardonea morio Walk., Lithosia cordula Boisd. = curvinervis Feld., Deiopeia pura Butl. = ornatrix L., Mibodora agis Boisd. = Scedros dilatata Walk., Xanthyris osera Boisd. = Phalcidona vespei'tina Walk., Josiomorpha longivitta Feld. = /. penetrata Walk., Xanthyris pseudisis Boisd. = Flavinia ^ae/« Walk.; X. adunca = Flavinia intercepta Walk.. Letocles alcera Boisd. = Sangala coelisigna Walk., Letocles decia Boisd. = Sangala beata Walk., Melanchroia rubriplaga Feld. = Lithosia rubriplaga Boisd. = Oenotrtis dispar Walk., Melanchroia spima Hy. Edw. = Oenotrus secretusWsdk., Tanagra expositata Walk. = Melanchroia cephise Cr., Laurona panamensis Butl. = rica Butl. = Ditaxis sora Boisd. = Laurona rica Hb., Epilais zetila Boisd. = Lau- rona subafßicta Walk. = Laurona syma Walk., Dioptis salvini Feld. = D. nocti- luces Butl. und Dioptis erycinoides Feld. = D. ithomeina Butl. — Aganais lacteata Butl. - albifera Feld.; Snellen ('■'!; Ammatho delineata Walk. = ? Calligenia rho- (ZmaH.-Sch., Bizone perornata^aWi. - ptcella Dr.; Pagenstecher (' ) ; Damalis onusta Weym. = Aganais egens Walk, var.; Pagenstecher (^) ; Earias tristrigosa Butl. (ISSll = anthophilana Snell.; Snellen ('*) ; Eniydia chrysocephala Hb. nicht = cribrum L.; Santos; Lithosia caniola Hb. und lacteola B. verschiedene Arten ; Miniere (^j; Lithosia histrioiiicaH. -Hch. = Tigrioides alte rna Walk.] Rosenstock| Philona cinerascens Moore = Aganais inops Butl. var., Scatopsyle tricolor Walk., Weym. = Hypocrita flavicollis Snell.; Pagenstecher (') und Sinna Fentoni'QwÜ.. = Teinopyga reticularis Feld.; Snellen ("). Butler ('') dagegen betrachtet Ä««a Fentoni als eigeue Art und setzt Teinopyga haemacta Snell. = Sinna calospila Walk, und T. retictdaris Feld. = Sinna extrema Walk. Actea minutaw. Ecuador; DrUCe (^) p 526 — draconis n. Panama; DrUCe (*) p 145 Fig. Aemene plumatella u. Guatemala; DrUCe (') p 141 Fig. — niasica n. Nias; Pagen- stecher ('i p 25 Fig. Aganais vitessoides ^neW. var. n. Nias; Pagenstecher (') p 1". Apistosia tenehrosa n. , enna n. Mexico, metella n. Guatemala, sylla n. Panama; Druce (') p 121-122 Figg. Areva leptalina n. Costa Rica, marginata n. Guatemala; DrUCe (^) p 133 Fig. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 515 Druce (i) 102, 103. Druce (') tmperia lis Astyochia n. (Dioptidae) crane n., faula n. Panama, fessonia n. Costa Rica; Druce (') p 157-158 Figg. Atolmis ßavicoUis n. Mexico; Druce (^) p 132 Fig. Autoceras phelina n. Panama; Druce (') p 139 Fig. Bepara chigxiinda n. Ecuador ; Druce (^) p 524 Fig. Brunia chota n. Poona; Swinhoe {^) p 293 Fig. Cisthene polyzona n. Mexico, citrina n. Panama, criton n. Guatemala; p 123-124 Figg. — plumbean. Texas, lactean. Califoniien ; Stretch p Coementa n. (Lithosiinae) timon n. Costa Rica, morio n. Guatemala; p 123 Figg. Crambomorpha sericea u. Mexico; DrUCe (') p 132. Cyme pardalina Feld. var. n, Nias ; Pagenstecher (^) p 24. Darna splendens n. Costa Rica; DrUCe (' p 147 Fig. — unifasciata n., n., tripiinctata n. Ecuador; Druce H p 526-527 Figg. Derrhis n. Typus Nudaria mundana L.; Wallengren (^) p 259. Devara bubona n., phyleis n. Ecuador; Druce (^] p 531 Fig. Dtoptis candelaria n. Panama; Druce (') p 157 Fig. Ephialtias ilaire n. Panama, ariaca n. Mexico ; Druce (^) Erbessa calydon M., capena u. Ecuador; DruCe (^j p 534. Euagra ribbet n. Panama; Druce (') p 153 Fig. Eubap?ie Rogersi \\. Costa Rica, marginata n. Guatemala; Eudule tripiinctata n. Mexico, lineata u. Guatemala; Oruce (^) p 138 Figg. — sicelides n. Bolivia, tritonia n. Ecuador; Druce ('^) p 524 Fig. Eurylomia ochreata n. Honduras; DrUCC (') p 134 Fig;. Flavinia velatan. Panama; Druce [^] p 151 Fig. — Peru, ops n. Neu-Granada ; DrUCe (^) p 529 Fig. Formiana n. (Melameridae) maenades n. Bolivia; Druce Ghoria collitoides w. Nikko, Japan; Butler ('') p 115. Hagnagora Buckleyin., lex n. Ecuador; DrUCe (^) p 527 Fig. — catagrammina n Nicaragua; Druce (') p 148 Fig. Hiera n. (Melameridae) gyge n. Panama Josia frigida n. Guatemala, decorata n. n. Colombia, oribian. Peru; Druce Josioides sibyllae n. Ecuador ; Druce (•^) p 147 Figg. Druce p 136 Fig. cyrene n. Bolivia, roxana n. (2) p 528 Fig. ; Druce (') p 142 Fig. Mexico; Druce (') p 149 Fig. (2) p 527, 528. p 523 Fig. glycera Panama, lutea n. Guate- ßammea n. Madagascar; Josiomorpha striata n. Ecuador; Druce (2) p 528 — gigantea n. Costa Rica; Druce {^) p 150. Katha aprica u. Japan; Butler {*) p 115. Laurona chthonophyle n. Mexico; DrUCe (*) p 156 Fig. Leptidule medea w. Guatemala; Druce (•) p 139 Fig. Lithosia alba n. Mexico, laudamia n. Guatemala, alba n. mala, intermedia w. Mexico; DrUCe (') p 131 Figg. — Mabille (2j p 57. Lycesfornax n Ecuador; Druce (2) p 525 Fig. Mennis ßdentia n. Columbien, herona n., ßculnea n., hagno n., halia n., ficaria n. Ecuador; Druce (2) p 530-531 Figg. Mesenochroa Rogersi n. Costa Rica; DrUCe (*) p 128 Fig. Micropus elegans n. Ecuador; DrUCe (2) p 529 Fig. Miltochrista bivittata n. Niigata, Japan; Butler ("*) p 116. Mosada consolatrix n., jocularis n. Melbourne; RosenstOCk p 3S1 Fig. Nelo uxisama n., xenopithia n., tolosa u., tomisa n., veliterna n., splendens n., fustiva n., paterna n., philodamea n. Ecuador; DrUCe (2) p 532-534 Figg. Nola patella n., ophrydina n. Mexico, philodina \x., tninuta n., melicerta u., inter- 33* 516 Arthropoda. median.^ patinaw., terulosa n., vulgaris Xi. Costa Rica; DrUCe (' p i;U)-14l Figg. — hyemalis ii. Californien; Stretch p 102 — microphasma ii. Yokohama; Butler (^) p 117. Odozana hercyna \\.^ elis n., cordahila n . , hippona xi. Guatemala; DrUCe (') p 124 125 Figg. Oenotrus striatus n., pacilius n. Guatemala; Druce (^) p 154-155 Fig. Philenora n. Typus Aconita [!] undulosa Walk.; Rosenstock p 3S2. Polypoetes n. (Dioptidae) deldon n., etearchus n., demades n., eriphus n. Guatemala, esernius n. Costa Rica; Druce (^) p 159, 160 Figg. Pseudebessa cassandra n., caresa ii. Ecuador; Druce (-^j p 5.35. Pseudomennis coccinea \\. Honduras; Druce (^ p 152 Fig. Pseudotalara w . 'Lithosiinae) chrysippa r\. Guatemala; Druce (^) p 126 Fig. Ptychoglene xylophila n. Mexico, rubromaryinata n. Costa Rica; DrUCe (^ p 129, 130 Fig. — splendidaw. Ecuador; Druce (^; p 524 Fig. Poeselia pascua ü. Poona; Swinhoe (•') p 293 Fig. Sagaris horae u. Panama; Druce (' p 144 Fig. l:iamera n. Typus Lithosia muscerda Hufn.; Wallengren (\ p 271. Sangala antiphates n. Ecuador; Druce {'} p 5 34 Fig. Sarrothripa undulana Hb. ab. glaucana ii. Bahusia, Scliweden ; Lampa p 31. Sceaßuonina n., orilochia n., cleonica u. Ecuador; DrUCe (-) p 525 Fig. Talara pelopia u. Panama; Druce (') p 125 Fig. Teinopyga haemacta n. Java; Snellen ('i p 1 Fig. Tithraustes n. (Dioptidaej hemon n., deiphon n. Panama, eieocles u., butes n. Guate- mala ; Druce (S p 158-159 Figg. Tuina sangala n. Guatemala; Druce (') p 122 Fig. Virbia thersites n. Panama: Oruce ^) p 154 Fig. Familie Arctiidae. Plötz C^) theilt diese in 5 »Familien«: Charideina, Pericopina, Chelonina, Dejopeina und Nyctemerina. Druce (' setzt seine Bearbeitung der Subfamilie Pericopinae fort und behandelt auch die letzte Subfamilie, die Arctiuae genuinae ; von jenen bespricht er 3 gen., 11 sp., 4 n., von diesen S gen., 13 sp.; er bildet Pericopis Felderi Bohd. wnd Pericopis sah ini Feld ah. Wallengren i^i beschreibt aus Skandinavien 9 gen., 2 n. mit 18 sp. — Arctia geneura Str. Q, beschrieben French ('i; Brachysoma generisch von Chnndrostega unterschieden Austaut ('); Callimorpha Domimda L. var. persona Hb. und var. rossica Koll. besprochen und abgebildet, Nemeophila plantaginis L. und varr. besj) rochen StandfuSS ('- : Spilo- soma menthaHtri\j. ab. W alkeri i^wvi. Bieter. — Synonymisches. Pericopis irenides Butl. = heliconides Boisd. = angulosa Walk., Pericopis me Walk, (non Hb.) = phoeba Boisd., Arctia pseuderminea Harr. = caprotina Dr. = Leucarctia acria Dr.. Arctia autholea Stretch — mexicana Gr. = docta Walk, und Heraclia commixta Butl. = fervida Walk. DrUCe (^]; Amerila Piepersii Snell. = A. arthrus- Bertrandi Guer. Snellen (•*); Arctia Quenselii Payk. var. gelida Schöy. = liturata Men. Lampa; Arctia elongata Stretch = ? Nevadensis var. Neumoegen ('-, ; Callimorpha hera L. (1764) = Phalaena (/uadripunctaria Foda, 176;}; Stein | Epatohnisjaponica Walk. ~ Estigmene luctifera Butler (^); Nemeophila Steph. = Diacrisia Hb. Rogenhofer (1); Nemeophila Selwynii Hy. Edw, = Scudderi Pack Stretch und Pleretes = Pericaltia Hb. Rogcnhofer (^). Aloaßora n. Bombay; Swinhoe {^) p 296 Fig. Alope cluvatus n. Poona; Swinhoe {'\ p 295. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 517 Ammobiotan. Typus Chelonia Hebe L.; Wallengren (') p 304. Arctia Dehama n. Nias ; Pagenstecher (') p 14 Fig. — villica L. varr. Schlesien ; Gerth, Lehmann (^) — ■ jmrpicrea v&r. ßava n. Schlesien; Lehmann (^J p 13 — cfija L. varr. England und Schlesien ; Pearce und Thorwarth ('^) — approximata n. Canada, obliterata r\. patria ?, elongata w. Washington Terr.; Stretch p 104, 105 — nevadensis G. & R. var. viormonica n. Utah, var. sulphurica n. nom. ( = ochmcea Neum.); Neumoegen P) p 93. Axiopaenaßuviatilis w. Afganistan; Swlnhoe (^) p 351 Fig. Callimorpha reversa n. Canada; Stretch p 101 — domimda L. var. italica n. Italien ; Standfuss P) p 26 Fig. Coreura Sahnoni n. Columbien ; Druce f^) p 521 Fig. Crocota Belfragei n., costatau. Texas, obscura \\. {= ferrnginea V'Ack., non Walk.) Pcnnsylvanien ; Stretch p 103. Estigmene moerens n. Yokohama; Butler (') p IM- Euchaetes murina rx. Arizona, Bolteri n. Texas; Stretch p lOü. Eucgane childo7i u., phlegon Tl., chesalonn., chislon n. Ecuador, Sinisoni n. Colum- bien; Druce (^l p 520-521 Figg. Gnnphaela Morrisoni u. Mexico; DrUCe (') p 1 1 ö Fig. — disjuncta n. Mexico; Hy. Edwards (^j p 128. Halesidota scapularis n. Nord-Mexico; Stretch p 106. Hyalurga caralis n. Ecuador, "l puhites n. Obere Amazon; Druce ("^) p 522. Isostola superba n. Guatemala; Druce (') p 115 Fig. Nemeophila Geddesi n. Britisch Columbia; Neumoegen (') p 137 — Selwynii n. Ontario; Hy. Edwards (*) p 65 — plantagints L. var. Schottland; Hoffmann (') p 356. Orodemnias n. Typus Arctia Quenselii FsLyk.; Wallengren (') p 317, Pericopis Daphne u. Panama, umbran. Salvador: DrUCe (') p 113 Figg. — irene n. Paraguay, phyleis n. Ecuador; Druce (^) p 523. Phaloe pyste n. Ecuador; DrUCe P) p 522. Phryganopteryx n. Typus strigilata Saalm. Madagascar ; Saalmüller p 155-156 Fig. Seirar ctia Lewisii n. Japan; Butler (^) p 115. Sjnlosoma mona n. Mahableshwur ; Swinhoe (•') p 295 Fig. Familie Liparidae. Berg (^) bespricht das gen. Laora Walk, und seine 4 sp.; Ocnogyna deserticola Berg gehört in dies gen. Aurivillius (^j bespricht und bildet ab Dasychira Rossii Curt. aus Asien. Nach Rosenstock sind Lerra ««ro*« Walk, und Sezeris conßectella Walk. Lipariden. Swinhoe (^) bespricht 25 sp. aus Deccan und beschreibt das (^f von Ohne fusiformis Walk, und Perina basalis Walk., das Q. von Lymantria obsoleta Walk, und beide Geschlechter von Enome detersa Wa\k. (Figg.; Q unge- flügelt), welche nicht aus Mauritius stammt. — Synonymisches. Bombyx cygnea Thb. = Porthesia similis Fueßly Lampa; Caviria cygna Moore = Leucoma impressa Snell. Snellen [^) p 40 ; Euproctis incomta Snell. durch Zucht als = flavata Cr. bewiesen Snellen (•') ; Plusargyria principiaria H.-Sch. (1856) = Thalaina in- scripta Walk. (1855) ROSenstOCk; Porthesia Steph. = Euproctis Hb. Rogen- hofer (*); Thaumatopoea üb . {Cnethocampa üteph.) ist eine Liparide Rogenhofer (1). Jana Marianu White Westwood (Fig.). Ocneria .ffomarow Christ, abgebildet Romanoff. Aroa Luisa n. Nias; Pagenstecher ') p 26 Fig. — sagrara n. Belgaum, clara n. Bombay: SwInhoe ('^j p 299 Figg. 5j^g Arthropoda. Artaxa Leithiana Moore varr. SwinhOG (^j p 298 — conspersa n. Japan; Butler (*j p 117. Callitearu pseiidabietts n. Nikko : Butler i;*) p 118. Dasychira Pryeri u. Yokohama; Butler (^) p 119 — platyptera n. Magellan-Inseln : IVIabllle i"^) p 58 — Mabillei n. Senegambien ; Rochebrune p 30 — colini n. Seuegambien ; iVJabille (') p 31, Epicoma jjontißcalis n. Melbourne; Rosenstock p 383. GynaepJiora xercmipelina n. Poona; Swinhoe (•^) p 299 Fig. Laelia gif/antea n. Yokohama; Butler (^) p 117. Nerice bipartitan. Nikko; Butler (' p 119. Ocneria Raddei n. Caiicasien ; Romanoff p 10 Fig. — disparh. var. Schlesien; Dietrich p 17. Olene olearia n. Poona; Swinhoe /^j p 297 Fig. Orgyia aurolimbata Gu. var. Caiicasien; Romanoff p 8. Fortheiria etcrydice n. Ja.Tßan; Butler ('j p 118. Psilura monacha L. var. Schlesien; Dietrich p 17. Familie Megalopy gidae. Plötz [^: stellt diese Familie zu den Limacodiden. Packard ^^j fand 7 Paar Abdominalfttße bei der Raupe von Lagoa crispata Pack. Familie Lasiocampidae. Plötz /') theilt diese Familie in 2 Familien Lasiocampina und Eutrichina. Christoph (^j bespricht und bildet ab Bombyx acanthopkylli Chr. Swinhoe ('') be- spricht Eupterote iindata Bl. und Trisida variegata Moore und beschreibt das Q von Eupterote discrepans Moore und Messata castanoptera Moore. Camboue (•^) beschreibt Borocera madagascariensis Boisd. Q — Darala undidata Feld. = Cb/Ms.srt Ärts^'jrem Walk. Rosenstock; Bombyx Stvalj&L = Taragama gmiesa heL Q, Bombyx Brahma Lef. = Lebeda Buddha Lef. ^ Swinhoe Bomhyx lotivs.T. algeriensis n.. Slaudmgeri T\. Algerien; Baker i') p242 — Hyadesi n. Magellan-Inseln; IVIabille (-/ p 58 — ■ bilineata n., subulva n. Senegambien; IVIabille (i) p 3i. Chrostogaslria brevivenis n. Nikko; Butler (^) p 119. Colussa vmosa n. Melbourne; Rosenstock p 384. Dirphia zeta n. , Rtischeweyhi n. Argentinische Republik; Berg 0 p 267, 268. Eupterote gyra n. Belgaum , diabolican. Belgaum; Swinhoe (^ p 303 — lucia n. Manipur; Butler (")p 347 Fig. Gastropacha Bheroba Moore var. n. Sumatra; Heylaerts [^, p 122. Megasoma Alpher ahyi vl. Schahrud ; Christoph (^j p 202 Fig. Messata Iranslata n. Sattara; SwinhOO '*) p 304 Fig. Trabala irrorata n. Mergui ; MoorO (^) p 205. Familie Bombycidae. Swinhoe -f beschreibt das Q von Trilocha varians Walk Andraca gracilis n. Nikko; Butler (^) p 125. rrismosticta hyaltnata n. Nikko: Butler (^) p 125. Rondotia n. Menckma n. China; Moore ("^j p 491, 492. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 519 Familie Ceratocampidae. Plötz (^; characterisirt diese Familie und stellt sie den Bombycidae am nächsten. Adelocephala bicolor var. stiprenia n. Iowa; Neumoegen (^) p 94. Familie Saturniidae. Plötz (*^) tlieilt diese Familie in Aiitomerina und Saturnina. Unterschiede von Attacus rmc^Ms Tepp, und A. splendidus Beauv. J. B. Smith i *) ; Fla4i/smma po- Zyomw?«^« Tepp. Q ist eine Plaii/scmiia , aber fj' eine Callosamia\ Hulst (^); die Gattungen sehr schlecht unterschieden Neumoegen (^); Adams cynthia Dr. Rame. Attacus orizava = splendidus Beauv. NGUmoegen ('); Antheraea sirnjüicia Mss. W. = DioneY., Eiidelia vulpes Butl. = E. Aristoteliae Phil. MaaSSen & Weyding. Dieselben liefern Figuren von Bwiaea satumus F. ? ^ , Gonimbrasia obscura Butl. Q. , Antheraea Dione F. Q. , Antheraea Barcas Mss. W. (^, Antheraea zambesia Feld. Q, Bunaea hyperbms Westw. (^, Eudelia Aristoteliae Phil. (^,Q., Saturnia galbina Clem. Q, , Bunaea acetes Walk. ? (^f , 2 » Saturnia dyops Maaß. besprochen Westwood. Bunaea aslauga Kirb. und B. Thomsoni Kirb. abgebildet WaterhOUSe f). Brahmaea lunulata Brem. var. Christophi Stgr. abgebildet Romanoff. Actias Leto Dbl. var. n. cf Maassen & Weyding F 106, 107. Aglia tau L. ah. fere nigra n. Thüringen; Thierry-Mieg p 437. Antheraea anna n. Mombas , Licharbas n. Central-Africa ; Maassen & Weyding F 88, 89. Attacus Atlas L. var. n. Timorlaut ; Kirsch p 277 — ricini var. n. Thomson p ö(j. Bunaea epithyrena n., melinde n. Zanzibar, ^^y^mf/e« n. patria ? ; MaaSSen & Weyding F 86, 87, 92, 93, 100. Copaxa dentifera n. Delagoa Bay ; Maassen & Weyding F 115. Dirphia perdix n. Süd-Brasilien; Maassen & Weyding F 105. Emielia daphnea n. Chile?; Maassen & Weyding F 103. Gonimbrasia Hebe n. Alt-Calabar ; MaaSSen & Weyding F 112. Hemileuca strigosa n. Brasilien ; Maassen & Weyding F 123. Hyperchiria midea n. Para, crudelis n. Mexico, praecruenta n. Rio, accuminata n. Brasilien, aurora n. Rio ; Maassen & Weyding F 116-120. Ludia Detvitzi n. Cap ; Maassen & Weyding F 90, 91. Micrattacus Bulaea n., violascens n. Brasilien; MaaSSen & Weyding F 124-126. Molippa nibasa n. Mexico, basina n. La Guayra; IVIaaSSen& Weyding F 121, 122. Samia cecropia L. var. n. ThOHISOn p 66. Saturnia ? terpsichore n. Delagoa Bay; Maassen & Weyding F 113, 114 — sp. n. ? Madagascar ; Camboue (■^) — cervina n., ftavida n. Matabele Land, terjisi- chorina n. Südost- Africa, hyperbius n. Süd-Africa ; WestwOOd p 357 — cepha- lariae n. Caucasien ; Romanoff p 14 Fig. Telea polyphemus L. aberr. Nord-America ; Fischer (') p 77. Familie Drepanulidae. Von Plötz {^j in Drepanulina und Cilicina getheilt. Argyris superans n. Yezo ; Butler (^) p 122. Callicilix n. abraxata n. Yezo; Butler (' p 124. Drepanafalcatariah. var. Schlesien; Kittsteiner ('-j p 15. 520 Arthropoda. Familie Notodontidae. Plötz (^) theilt auch diese Familie in 2 Familien : Notodontina und Pygaerina. Dasselbe thut auch Butler {*], nennt aber die letztere Phaleridae. Derselbe [^) bespricht und beschreibt Lophopteryx Ladislai Oberth. Erschoff bildet Clostera curtuloides Ersch. ab. French ("^) bespricht Ichthyura palla Fr. — Bomhyx serra.ta Tlib. = Notodonta trepida Esp., Bumbyx pityocampa Thb. = pinivora Tr. Lanipa; Fentoma Inevts Butl. = »Harpytm ocypete Brem. Butler (*); Harpyia saltensis Öchöyen = ajatar Schilde = furcula var. borealis Boh. Lampa) Harpyia Petri Alph. = interrupta Chr. Romanoff Fig. Arsacia frontirufa n. Bombay; Swlnhoe {^) p 301 Fig. Corma ernestina n. Bombay; SwInhoe (^) p 3(l2 Fig. Discophlebia Lucasii u. Melbourne; Rosenstock p 421 Fig. Drymonia circumscripta n. Nikko ; Butler (*) p 12ti. Ichthyura restitura Walk. varr. Deccan ; Swinhoe '/ p301 — Brucei rx. Colorado; Hy. Edwards (^) p 17. Janassa lignicolor var. coloradensis n. Colorado; Hy. Edwards (^) p 17 — laciniosa n. Mexico; Hy. Edwards ("^i p 128. Microphalera u. grisea n. Yezo ; Butler (') p 120. Nadata Behrensii n. Californien; Hy. Edwards ;') p 49. Notodonta notaria n. Colorado; Hy. EdwardS ('^) p 17 — Grummi n. Caucasien ; Romanoff p 2 1 Fig. Phalera Bobi n. Bombay; Swjnhoe {^] p 302 Fig. Phragmatoecia foeda n. Kurrachee ; Swinhoe (') p 515 Fig. Rosama macrodonta n . Japan; Butler (^j p 127. Familie Limacodida e. Plötz f'; rechnet hierzu die Phricodina, die Megalopygina und die Limacodina. Gastropacha velutina Ys.o\\txx \^i QmQ Natada , Belgoraia suh?iotata Walk. = Can- dyba punctata Wa\k.: Swinhoe (•^) . Aphendala divaricata n. Cachar ; Moore {^) p 235. Limacodes argentifera n. Matabele Land; WestwOOd p 358. Microleon Vi. longipalpis n. Yokohama; Butler (' p 121. Jliresa inornata n. Yokohama; Butler (^; p 120. Familie Psychidae. Heylaerts(^) bespricht und bildet ab Amicta uralensis Fvv . , Epichnopteryx Hof- mamii Heyl., E. ßavescens Heyl. mit var. Kiddschaensis Heyl., E. Staudingeri Heyl., E. Millieri Heyl., E. nocturnella Alpher . \ Bijugis Alp her akii Key\., pro- ximaLcd. imä Ftmiea Rouasti Heyl. Derselbe (') verbessert die Beschreibung von Eumeta ernesti Heyl. 1= ? Psyche albifrons Wa\\.). — Synonymisches. Kophene Weycrsi Heyl. = K. bipars Walk. iPerina) Heylaorts (''/ ; Oiketicus tabacillus Weyenb. (1SS4) = Oi. Geyeri Berg 1877) Berg (•^); Oiketicus variegatus 8ne\l. = Cramerü Westw, Snellon (^ ; Psyche graminella Schiff. = dubia Scop. = hirsuta Poda Rogenhof er; Psyche detritahed. = viciella Schiff, var. ?, Ps. casanellaljvwand. = Pachytdia villosella 0., Ps. hirtella Ev. = Pachytelia villosella 0., Ps. demissa Led. = Amicta uralensis Frr. var. Heylaerts (^) ; Psyche plumif er a 0. = hieracii Thb. = atra L. Lampa. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 521 Amicta lutea Stgr. var. Armena n. Armenien, var. Schakuhensis n. Schahkuh ; Heylaerts i») p 178 Figg. Chalia grisea n. Adelaide, lurida n. CapYork; Heylaei'ts ('') p 1 iU — j'avana n. Java; Heylaerts i*) p 85. Clania tenuis n. Melbourne; Rosenstock p 122 Fig. Eumeta Emesti n Sidiiey ; Heylaerts (^ p 120 und ," p 14S — ? Hehmeyeri n. Java; Heylaerts ('^/ p 5ü — Leeuweni n. Neu-Holland ; Heylaerts 1^) p 118. Kophene IVeyersi n. Sumatra; Heylaerts (') p 69 [vergl. Heylaerts ;'•)]. Oiketicus Deivitzi rv. Sidney ; Heylaerts [^) p 119. Oreopsyche pyrenaeella H.-Sch. var. albescens n. Österreich; Heylaerts '\}j p 35. Familie Cossidae. Swlnhoe (^) beschreibt das (^ von Arbela tetmonis Moore. Romanoff bespricht die Unterschiede zwischen Endagria ulula Bkh. aus Tiflis und aus Europa. Dy- spersa Hb. statt Endagria Boisd. zu brauchen; Rogenhofer ('). Cossus alniu. ? (nur die Raupe und Puppe) Nord-America ; KellJCOtt (;') p 175. Endagria Alpherakyi n., saxicola n. Caucasien ; Romanoff p 3, 5 Figg. Romanoffia n. iniperialis n. Chiriqui ; Heylaerts [^) p 173 Fig. Zeuzera n. sp. Caucasien ; Romanoff p 2. Familie Hepialidae. Nach Lampa p 37 ist Hepialus velleda Hb. = mappa Donov. » fusconebulosus De Geer (1778). Hepialus fuscus n. Magellan-Inseln; Mabille (^j p 56 — himiuli L. var Q England; Porritt ('') — argenteomaculatus var. n. Dalhousie , New Brunswick ; Fletcher ;4) p 23. Phassus triangularis n. Mexico; Hy. Edwards ^^j p 128. Familie Cymatophoridae. Cymatophora orF. - ypsilon graecum Goeze (1781), Bomhyx cinerea Goeze = Cymafo- phora ßavicornis h. Lampa p 17, 48. Toxolmna australe Feld. = Caesa viduella Walk. = Uraba lugens Walk, und ist eine Cymatophoride Rosenstock ('). Gono- phora Brnd. = Habrosyne Hb. Rogenhofer. Asphalia punctigera n. Hakodadi ; Butler (^) p 131. Thyafiraßavida n. Hakodadi; Butler (^) p 131 — Hedemanni n. Cauca&ien ; Roma- noff p 24 Fig. Familie Bombycoideae. Plötz (*') theilt diese Familie in 2 Gruppen Bryophiiina und Acronyclina. Bei Wallengren (*) dagegen wird diese Familie durch 2 Gruppen der Arctiideu, die Dilobidae nov. trib. (mit den schwedischen gen. Diphthera , Diloha, Punthea. Simyra und Demas] und die Acronyctidae [Acronycta, Craniophora, Bryophlla. Moma) repräsentirt. Apatela pudorata Morr. = grisea Walk., A. Walker i Andi. = alborufa Gr., populi Riley = lepusculina Gu^n., Graeßi Gr. = innotata Guen. und impressa Walk. = fasciata Walk. = Vtrrillii Gr. = brumosa Guen. Grote (\1. Noclua pruni Quensel = Acronycta strigosa F., Moma Orion Esp. = M. alpiutn 522 Arthropoda. Osb. (1778) Lampa p 49, 50. Bryophila glandifera var. par et impar Stt. be- schrieben Kane {^). Acronycta Ligiistri L. ab. Stindevalli n. Schonen, Schweden; Lampa p 50. Bryophila seladona n. Caucasien ; Romanoff p 28 Fig. Clidia excelsa n. Schahkuh, Persien; Christoph (^j p 205 Fig. Familie Noctuidae. Plötz (^) theilt diese große Familie in 38 Subfamilien, welche er auf folgende Weise in 5 Gruppen ordnet: 1. Noctuae genuinae mit Leucaniina, Glottulina, Gonoptericina, Orthosiina, Caradrinina, Amphipyrina, Noctuina, Eriopodina, Hadenina, Xyliniina, Cleophanina, CucuUiina, Eurhipiina, Heliothina, Acontiina, Hyblaeina , Diopsina , Piacodina , Plusiiua, Calpina, Ophiderina, Ophiusina ; 2. Noctuophalaenidae mit Erastriina, Anthophilina, Haemerosina; 3. Deltoidae mit Hypenina, Herminiina, Platydiina; 4. Pseudodeltoidae mit Toxocampina, Focillina, Amphigoniina, Thermesiina; 5. Homopteridae mit Bendina, Homopte- rina, Hypogrammina, Hypopyrina, Ommatophorina und Erebina. Waterhouse (') liefert Figuren von Rtosicada diversalis, Arthisma scissuralis und Calpe hicolor Moore. Moore (')setzt seine Bearbeitung der Noctuiden Ceylons fort [s.oben p492] und liefert Abbildungen von folgenden Arten: Ophiusa me taspila Wa\k. \ Pan- desma Quenauadi Gu^n. ; AnodajjJia boarmoides Guen.; Panilla dispüa Wsdk.-^ Girpa inanyiilaia Gnen., Girpa eriophora Guen. , G. pertendens Wsdk.; Caduca meleagris Feld. & R. ; Briada praecedens Walk.; Corsa liym'colora WaXk.; Dinumma placeris Walk. ; Seiepa celtis Moore ; Symmitha indica Feld. &R.; Plotheia frontalis Walk., P. spnrcata Walk., P. guthdosana Walk., P. hasifascia Walk., P. lichenoidrs Feld.; Catephia linteola Guen.; Melipotis cyllaria Gr . , M. cyllota Guen., M. di- rersipennis Walk., M. pannosa Moore ; Mosara apicalis Walk.; Vapara indistincta Moore; Stictoptera variabilis Moore, S. subobliqua Vf sdk. , S. trajiciens Walk.; Gyrtona dorsaUs Walk.; Hypocala efßorescens Guen., H. angulipalpis Guen.; Ble- nina dora7is Walk., B. accipiens Walk. , Othreis cajeta G\'., O. ancilla Gr.; Arga- desa materna L.; Maenas Salaminia Gr.; Rhytia hypermnestra Cr.; Adris rutilus Moore; Phyllodes maligera Butl. ; Isckyja manlia Cr.; Agonista ref/wcens Walk.; Oxyodes scrohiculata F.; Speiredonia retrahens Walk., S. zamis Stoll, S. feducia StoU; Sericia anops Guen.; Patula macrops L.; Argiva hieroglyphica Dr.; Nyctipao crepuscularis L.; Spirama coTmerens Walk., S. helicina Hb.; Hypopyra pallida Moore; Cyclodes omnia Hoev. ; Tanamina torsa Guen.; Hidodes caranea Cr.; Sphingomorpha chlorea Cr.; Thyas honesta Hb., Th. coronata F.; Minucia discrimi- nans Walk.; Maraldcnia palumba Guen.; Achaea melicerte Dr., A. serva F., A. mezentia Cr., A. reversa Walk.; A. combiiians Walk.; Serrodes campana Gn6n.; Naxia calefaciens Walk.; Delgamma calorißca Walk.; Caranilla onelia Guen.; Psiniada quadripennis Walk.; Anereuthitm includens Walk., A. frontalis Walk., A. conrfjV« Walk., A. trigonifera Wa\k., A. cur vif era Wa\k.; Dysgonia joviana Gr.., D. arcuata Moore, B. stnposaF., D. ftdvotaenia Guen., D . albivitta Guen . . D. simillima Gueu. ; Calesia leucostigma KolL; Tinolius eburneigutta Walk.; Dierna acanthumlis Walk.; Remigia frugalis F.; Caiminda archesia Cr.; Zethes decolor Walk., Z. Uneifera Walk., Z. usurpatalis Walk.; Egnasia cingalensis Walk.; Matella accingalis Walk.; Nagadeba indecoralis Walk.; Daxata bijungens Wsdk.; Platyja timminia Gl'.; Sympis rufibasis Guen.; Setieratia praeciptia Walk.; Azazia rubricans Boisä.; Sanys rivtdosa Walk.; Sonagaria scitaria Walk.; Dunira scitula Walk.; Mestleta abrupta Walk., 31. angidifera Moore, M. irrecta Walk., M. dtvisa Walk.; Capnodes trifasciata Moore; Gesonia scitula Walk.; Lacera alope Cr.; Amphigonia hepatizajis Guen.; Claterna cydonia Cr.; £pisj)aris varialis Walk.; 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 523 Corcobara anffulipennts Moore; Anondha parietcdis Wsi\k.\ Dichromia orosia Cr.; Bomolocha vestita Walk.; Hypena molpusalis Walk.; H. laesalis Walk., H. lacera- talis Walk., H. labatalis Walk., H. iconicalis Walk., Marapana mcongrualis Walk.; Ophiuche conscitalis Walk.; O. mistacalis Guen., 0. obaceralis Walk.; Nolasena ferrifervens Walk.; Aginna robustalis Guen.; Hipoepa lapsalis Walk.; Hydrillodes lentalis Guen., H. gravatalis Walk.; Echana abavalis Walk.; Corgatha omarmsalis Walk.; Pantura ophiusalis Walk. — Romanoff gibt Abbildungen von Agrotis Raddei Chr., Mamestra accurata Chr.; Caradrina vicina Stgr.; Heliothis Imperialis Stgr.; Thalpochares joadaris Chr., Th. debilis Chr.; Erastria diaphora Stgr., E. delicatula Chr.; Leucanitis Saissani Stgr.; Pseudophia Fixseni Chr.; Madopa inquinata Ld. und Bomolocha opulenta Chr. Erschoff bildet seine schon beschriebenen Arten Agrotis Ledereri, Agr. difßcilis und Erastria (?) penthina ab. Christoph ('^) liefert Figuren von Agrotis degeniata Chr. , A. stabulomm Bien. und A. mustelina Chr. Potamophora Schlegelii Snell. Snellen ('') Fig., Pinacia pupillalis Snell. Pagenstecher (') Fig. und Orbifrons singidaris Stgr. Christoph (1) Fig. — Besonders besprochen werden : Agrotis tritici, aqidlina und obelisca. Eine Art nach Atmore p) (auch A. nigricans), Carrington ('), Hall, Tutt (^ ^J [A. nigricans verschieden); aber verschiedene Arten, weil die Raupen verschieden, nach Gardner (') und Gregson (^); Agrotis Okakensis Pack, eigene Art Packard (3); Amyna (jVien. steht nahe zu Erastria Snelletl (^); Arcte coera/w Guen. und varr. Pagenstecher ('). Brytis encaustus Hb. RaguSa Fig.; Catocala spp. aus Nord- America JVIÖSChler; Cucullia cineraceaYxx . iVJilliere i')Fig.; Fodinoidea keine Arctiide, sondern nahe verwandt mit ColbusaiinäFodtna, »Caryatisu rubriceps Mab. wahrscheinlich eine Fodinoidea Butler (''■^); Hipoepa raptatalis Walk. Q beschrie- ben Swinhoe (^); Laphygma exigua Hb. ist nach der Raupe keine Caradrina Chretien (•'); Leuca7iia wiijmncta Enw. RIley (^j Fig.; MagtdabaWsilk. gehört zu den Thermesiiden Butler C-^) ; Taeniocampa Anonymus (*^). Synonymisches. Moore (*) gibt folgende Synonymen : Ophiusa pallidilineaVf'dlk. = O. metaspila Walk.; Homoptera divisistriga Walk. = H. dispila Walk.; Hulodes umbrosa Walk. = Remigia comitata Walk. = R. optatura Walk. = R. optativa Walk. = Girpa inangtdaia Guen.; Ophisma cumdifera Walk. = Hypopyra apicalis Walk. = Remigia pcrjidiosa Walk. = Ophisma deßcieris Walk. = Girpa erio]) ho ra Guen.; Or- theaga Walk. = Dinumma Walk.; Subrita curvife>-ella Wa\k. = Seiepa celtis Moore ; Ä'rtrroMnpa Feld. & Rog. = SymithaWsiXk.: OthoraWsiXk. = G aller omoT-phaFeld. = EgelestaWsdk. = Plotheia Walk.; Othora canescensW a\k. = Plotheia frontalisWaXk.; Othora lata = Plotheia sjmrcata Walk.; Othora sigtiata Walk. = O. omista Walk. = Plotheia gutttdosana Walk.; Cocytodes Guen. = Arcte Koll.; Ercheia Walk. = Me- lipotis Hb.; Achaea signivitta Walk. = Melipotis cyllota Guen.; MeUpotis am- bidens Feld. & Rog. = M. diversipennis Walk.; Aedia (part.) Hb. = Catephin (part.) Ochs. = Anophia Guen.; Anophia lateralis Walk. = Mosara apicalis Walk., Steiria Walk. = Stic top tera Guen.; Nephapteryx demptella Walk. = Gyrtona mo- nilialis Walk. ^ = G. strenualisWa\k. Q = G. dorsifascialis Walk. Q. = G. nigra- cinerea Walk. (J^ = G. hylusalis Walk. ^ ; Ariola bryophilina Feld. & Rog. Q, - Othora includens Walk. Q = Othora subfasciata Walk. (^ = Gyrtona do?-salis Walk. Q^; Parthenos (part.) Hb. = Hypocala Guen.; Corycia Hb. = Othreis Hb.; Ophideres cajeta Walk, (non Cram.) = Othreis pomona Hb. = pomona Cram. = Noctua Dioscoreae F. = Othreis fullonica L.; Ophideres midtiscripta Walk. = Othreis cajeta Gram.; Ophideres bilineosa Walk. = Othreis Hot7iaena Ilh . = Phalaena strigata Donov. = Othreis ancilla Cram.; Noctua hybrida Fabr. = Argadesa ma- terna L.; Potamophora Guen. = Ischyja Hb.; Lygniodes Guen. (praeoccup.) = Agonista Feld. & Rog.; Lygniodes disparatts Walk. Q = Agonista reduccns Walk.; Oxyodes clytia Guen. = 0. scrobindata F.; Speiredonia conspicna Feld. & Rog. = 524 Arthropoda. Ommatophora alhtfascia Walk. = Speiredonia retrahens Walk.; Sericea parvipennis Walk. = Speiredonia Feducia StoU ; Noctun huboY. = Patula macrops L.; Noctua uhda F. = Phalaena mygdonia Cr. = Ph. Hennonia Cr. = Argiva hieroglyphica Dr.; Nyctipao ephesperis Hb. = N. crepuscularis L.; Maxida Walk. = Hypopyra Gueo.; Beregra^-iW. - Cyc/ofZes Glien.; Beregra replenens\NB\)s.. = Cyclodes omma Hoev.; Entoniogranima squamicornis Feld. & Kog. = Entom. torsa Guen.; Sphingomorpha sipyla Gucu. = S. chlor ea Cr.; Lagoptera Guen. = Thyas Hb.; Thyas honesta Hb. = ? Noctua microrhaea F.; Corycia magica Hb. = Noctua ancilla Y. = N. leontna F. = Thyas coronata F.; Ophisma cognata Walk. = Minucia trapezium Guen.; Remigia Po^%ens Walk. = Hulodes pahmiba Gn6n.; Noctua tigrinaF. = Achaea melicerte Dr.; Achaea iJio Hb. = Phal. melicerte Cr. F 323 D. E. = Noctua mer- catoria F. = N. vidpina F. = Achaea serva F.; Sypna lugens Walk. = Achaea nie- zentina Cr.; Ophiusa obunibr ata Wa\k. = O. umbrosa Walk. = Caranilla onelia Guön.; Ophisma laetabilis Guen. = Henieroblemma peropaca Hb. = Noctua illibata Fabr. (siehe unten Pindara n.); Hypaetra Guen. = Anereuthina Hb.; Hypaetra complacens Walk. = Anereuthina includens Walk.; Grammodes (part.) Lecl. = He- machra Sodoff. = Ophiusa Guen. = Ophiusa 0. (part.) = Dysgonia Hb.; Ophiusa myops Guen. = Dysgonia jovis Hb. = Nocttia sinuata F. = Dysgonia joviana Cr.; Ophiusa joviana Guen. (non Cr.) = Dysgonia arcuata Moore ; Ophiusa festinata Walk. = Phal. achatina Cr. = Dysgonia stuposa F.; Grammodes notataF.'f = ? Fodina mundicolor Walk.; Calesia comosa Guen. = C. dasyptera Koll.; Calcsia stigmoleuca Guen. = C. leucostigma Koll.; Calesia patnia Feld. & Rog. = Pasipeda haemorrhoa Guen.; Phalaena Deliana StoU = Trigonodes hyppasia Cr.; Nahara Walk. = Dierna Walk.; Nahara clavifera Walk. = Dierna acanthusalis Walk.; Remigia translata Walk. = Chalciope lycopedia Geyer = Remigia frugalis Fabr.; Remigia bifasciata Walk. = Phalaena virbia Cr. = Phalaena archesia Cr. (siehe unten Cauninda n.)\ Zethes sondaicus Snell. = Z. lineiferaWalk.; Catada epops Feld. & Rog. = Zefhes cristifera Walk.; Ginea Walk. = CotusaYfaW. = Pla- tyja Hb. ; Hulodes falcata Feld. & Rog. = Ophisma trajecta Walk. = Ginea removens Walk. = Cotuza drepanoides Walk. = Sympis subunita Guen. = Platyja umminia Cr.; Thermesia signipalpis Wa\k. = Hypospila bolinoides Guen.; Thermesia consueta Walk. = Th. transducta Walk. = Azazia rubricans Boisd.; Homodes ther- mesioides Suel!. = Thermesia reticulata Walk. = Anisodes pyriniata Walk. = Sona- gara scitaria Walk., Hypena rubripimctalis Walk. ? = ? Hypena nisalis Walk. (siehe unten Dunira n.'; Selenis niviapex Walk. = Mestleta irrecta Walk.; Selenis semilux W^ilk. = Mestleta divisa 'W a\k . ; Capnodes ßnipalpis'Wn\k. = C. maculicosta Walk.; Lacera capella Guen. = L. aloi^e Cr.; Claterna Walk. = Brotis (part.) Hb. = Trigonia Guen. (praeoccup.) ; Claterna exagens Walk. = Focilla submemorans Walk. = Trigonia cydonialis Guen. = Herminia sidonia Guer. = Brotis cydoniaria Hb. = Claterna cydonia Cr.; PradiotaWsilk. = iVetmsm Walk. = EpisparisWaXk.; Episparis DavalliaF eld. &Rog. = E. signata Wsi,\k. = E. varialis Walk.; Dichromia oro.sialis Guen. = D. orosia Cr.; Hypena sparsalis Walk. = H. subapicalis Walk. = H. molpusalis Walk.; Hypena perna Feld. & Rog. = Ophiuche conscitalis Walk.; Hypena pactalis Walk. = Ophiuche mistacalis Guen.; Hypena obliqualis Koll. ? = ? Ophiuche obaceralis Walk.; Pechipogon Hb. = Pogonitis Sodoff. = Polypogon Schrank = Herminia Lair.; Zanclognatha (part.) Led. = Sophronia Du\i . ; prae- occup.) = Aethia Hb.; Bocana turpatalis Walk = Aginna robustalis Guen.; Bertula rapfalis Walk. = Hypoepa fractalis Guen.; Catada captiosalis Walk. = Hydrillo- des lentalis Guen.; Echana Tennentii Feld. & Rog. = Hydrillodes granatalis Walk.; Bocana tumidalis Walk. = Bertula ahjudicalis Walk.; Bithiasa Walk. = Lamura Walk. = Bocana Walk. = Lusia Walk, (praeoccup.) ; Laniura aberratalis Walk. = Bocana manifestalis Walk.; Diomea repulsa Walk. = Bocana determinata 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 525 Walk.; Catada fflomeralis Walk. = C. vagalis Walk.; Pm^ra*« Walk. = Imma Walk.; Pingrasa aecuralis Walk. = Imma bugosalis Walk.; Diomea imiscosa Walk ? = Labanda saturalis Walk. = Labanda muscosa Walk.; Gerbatha laticincta Walk. = Bocana pamphosalis Walk. = Labanda (»Bryophila« !) semipars Walk, mitl Moore ; Labanda herbealis Walk. = Plotheia chlor umella Moore = Labanda chlor omella Walk.; Apphadana Walk. = Dragana Walk.; Poaphila Concors Walk. = Apphadava evulsalis Walk. = Dragana pansalis Walk. ; Bleptina spurcatalis Walk. = Chusaris retatalis Walk. — Agrotis pseudoplecta Snell. = A. gypaetina Giieii. Snellen '"'); Agrotis beata Gr. = A. lubricans vax . , Agrotis campestris Gr. = decolor Morr. = verticalis Guen. = declarata Walk. J. B. Smith (^"); Agrotis ßmbria L. = ßmbriata Schreb. (1759), Agr. temera Hb. F 393 = A. obelisca S. V., Agr. glauca Hb. = A. biren Goeze Rogcnhofor ('); Agrotis haruspica Gr. (= grandis Speyer) ist nicht = augur F., Agr. scropulana Morr . = Wockei Möschl., Agr. simplonia Möschl. (non Hb.-G.) = dissona Mösclil., Agr. islandica Stand. var. Labradoriensis Möschl. = A. opipara Morr. und verschieden von islandica Stand., Agr. texana Gr. nicht = segetum L. J. B. Smith ('^) ; Aletia xylina nicht = A. argillacea Hb. Riley (^) ; Amyna axis Guen. = A. octo Guen. Butler (") ; Arioht Walk, praeoccup. durch Ariola Feld. & Rog. aber = Lophoptera Guen. Snellen ;"); Asteroscopus B. = Brachionycha Hb., Aventia Du]^. = Colposia Hh. Rogen- hofer ('); Bombyx signata Thb. = Aste?'oscopus nubeculosus Esp. Lampa| Brytis encaustus Hb. = Pancratii var. RagUSa; Caradrina leucoptera Spgb. (non Thb. - C. Menetriesii Kretschm., C. leucoptera Thb. = quadripunctata F. Lampa| Catocala paranympha\j. - C.fulminea Scop. Rogenhofer (^) ; Cerbia fugitiva Walk. — Pandesma anysa Guen. Swinhoe (^) ; Chalciope lycopodia Hb. = Remigia frugalis F. Butler ('); Cirrhoedia Guen. = Atethmia Hb. Rogenhofer (^) ; Cirrhoedia eden- tata Walk. = variolosa Walk. = auragoides Guen. = indica Guen. = Cosmophila xanthindyma Boisd. Butler (-) ; Cosmophila indica Guen. = C. xanthindyma Boisd. ^ Swinhoe ^^); G^mmesmSteph. = MeristisWo., HeliacaU.-'&Qh.. - Panemeria IIb. Rogenhofer (^); Lagoptera multicohr Guen. = L. elegans Hoev. Snellen (*) ; Leu- cania costalis Moore = X. nareda Feld. = L. yu Guen. Snellen (•') ; Mamestra lappo Zett. und M. qtiadriposita Zett. = M. glauca Hb. Lampa; Mania Tr. = Mormo Hb. Rogonhofer (\1; Mestleta acontioides Moore (1882) = Thalpochares pudica Snell. Snellen (•'); Noctua murina Goeze = Agrotis exclamationis 1^. , N. nVo.va Ström. (1783) sehr wahrscheinlich = Dianthoecia cacubali Fiießly [triangu- laris Hb.), N. viridiobscura Goeze = Polia polymita L., N. roboris Osb. = Dicho- nia aprilina L., N. secalis Bjerk. (1778) = ? Hadena didyma Esp., N. reticulata Goeze = Naenia typica L., N. typhae Thb. (1784) = typhae Auct. (= arundinis F.) (die Art kann folglich ihren alten Namen behalten) , N. c-nigrum Goeze = Taenio- campa gothica L., N. telifera Payk. (1786) = piniperda Panz. (1786) - Panolis griseovariegata Goeze (1781), N. furcata Ström. = cinerea Goeze = Cleoceris vinii- nalis F., N. hippophae Goeze = Orthosia Iota Gl., N.ßavago F., Thb. = Xanthia lutea Ström. (1783j, N. niasoreta Thb. = Orrhodia va%i punctatum Esp., N. angu- lata Goeze = Xylina furcifera Hufii., N. iota Thb. = Plusia pidchrina Haw. Lampa; Noctua ulula F. = Argiva hieroglyphica Dr. q^ Swinhoe {^]\ Noctua hepatica Goeze = Agrotis augur L., N. carnea Thb. (non Auct.) sec. sp. Typ. Fig. = A. brunnea Fabr. Lampa; Nyctipao nyctaculis Snell. ist eine Patida, (J^ be- sprochen Snellen (•'); Pachnobia carnea Auct. (non Thb.) = P. tecta Hb. Lampa; Prodenia venustida Walk. = Pr. infecta Walk. Swinhoe (*) ; Prodenia subter- minalis wahrscheinlich - Pr. retina H.-Sch. Butler ('',; ; Pr. ingloria Walk. - Pr. caradrinoides W idk . Butler ('^); Remigia optatura WiiXk. = optatira Walk. = Girpa inangulata Guen. Swinhoe (^) ; Rusina tenebrosa Hb. = Rus. umbratica Goeze (1781) Lampa; Taeniocampa ruMginosa ^co]^. - Taen. gothica \j. Rogenhofer ('); 526 Arthropoda. Tortrix Merianana Goeze = Flastenis retusa L. Lampa; Trachea atriplicis Koll. (in Hügel's Kaschmir) nicht = atriplicis L. Rogenhofer ('); Xanthoptera semi- lutea Snell. = Hypena obaceralis Walk. Butler ('). Acantholipes trifasdata n. Ceylon; Moore (') p 187 Fig. Acontia quintana n., ßrina n., excisa n., opella n., pulla n. Poona; Swinhoe (') 1) 455-456 Figg. — hortensis n. Kurrachee; Swinhoe (^) p 517 Fig. Adisurauncta n. Bombay; Swinhoe (*) p 449 Fig. Aethia albicosta n. Ceylon; Moore (\) p 232. Agrotis vana n. Sattara, Deccan ; Swinhoe (^) p 453 Fig. — brunnea F. ab. nigri- cans n. Oeland Insel; Lampa p 53 — plecta L. var. Andersoni n. Dalecarlien ; Lampa p 54 — typhUna n., gravida n., carbonifera n., frigida n. Magellan- Inseln, Ingouß n., bicolor n., digranima n., dianthoecia n., xanthostola n. Pata- gonien, apAe n. Algerien, «e^Äes n. patria ?; Mabille p) p 58-02 — cespitis u., conformis \\. Quetta, Afganistan; Swinhoe (^ p 349 Figg. — Hahnin., Korsa- kovi n. Caucasien ; Romanoff p 33, 35 Figg. — Rotnanovi n. Caiicasien ; Chri- stoph in Romanoff p 37 Fig. Alamis umbrina Guen. var. Sumatra; Heylaerts C^) p 123. Anarta trisema n. Magellan-Inseln ; Mabille (-) p 64 — melanopa Thb. ab, Wistriimi n. Jämtland, Schweden; Lampa p 81 — mimuli n. Nevada; Behr (') p 62. Anophia olivescens Guen. varr. Deccan; Swinhoe (*) p 401 — diphtheroides n. Cej'- lon: Moore (') p 118 Fig. — Arnoldin. Nias ; Pagenstecher (') p 28 Fig. Anthophila zamia n. bulla n. Kurrachee; Swinhoe (^) p 518 Figg. Apamea viriata n. Poona; Swinhoo (^) p 450 — pullata n. Argentinische Republik; Berg (^) p 269 — Lebruni n, Patagonien; Mabille (^) p 63 — repetita n. Yoko- hama ? ; Butler (4) p 133. Apphadana rusticula n., nigrofusca n. Poona, rubicundula n., festivan. Bombay; Swinhoe (^) p 474-475 Figg. Arasada n. (Remigiidae) /»ym^//bnms n. Ceylon; Moore (^) p 188, 189 Fig. Arcte taprobana n. Ceylon; Moore (') p 1 13 Fig. Atethmia canescens n. Californien ; Behr ('^ p 61. Axiopaena [siehe Arctiidae, wohin die Gattung nach der von Christoph entdeckten Raupe gehört]; Swinhoe (^) führt seine neue Art zu den Amphipyriden. Axylia bucephalina n. Patagonien; Mabille (-) p 63 — furtiva n. Poona; Swin- hoe (■>) p 448. Bleptina sordescens n. Melbourne; Rosenstock p 424 Fig. Bocana subapicalis n. Ceylon; Moore (') p 244. Bomolocha vestita n. (= Hypena r homb alis WaXk., non Guön.) Ceylon; Moore (^; p 22 1 Fig. Brep/ios Parthenias L. ab. Passetii n. Paris; Thjerry-Miog p 437. Byturna cxicullata n. Ceylon; MoorO (') p 254. Caduca n. (Homopteridae) Typus Alamis meleagris Feld. & Rog.; MoOre (') p 96. Callopistria Yerburii n. Aden; Butler ('^) p 496. Callyna costiplaga n. Ceylon; Moore (') p 100 Fig. Calophasia simplex n. Patagonien; Mabille (■^) p 64. Capnodes minor n. Ceylon ; Mooro (') p 212 Fig. Caradrina Bremusa n. Poona ; Swinhoe (^) p 451 — belucha n. Quetta, Afganistan; Swinhoe [^] p 34 8 Fig. — sabuhsa n. Kurrachee; Swinhoe (') p 510 Fig. ~ paupera n. Caucasien; Romanoff p 56 Fig. Caranilla n. (Dysgouiidae) Typus Naxia orelia Guen.; Moore (') p 169. Catocala Rama n. Ceylon; Moore (') p 128 Fig. — sancta u. Yesso, duplicata n. Japan; Butler {*) p 134-135 — Gitana n. Spanien ; Mabille (^i p 64 — afghana 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 527 n. Afganistan ; Swinhoe (^) p 352 Fig. — puerpera Giorna var. rosea n. Algerien ; Austaut (^) p 395 — cerogama Guen. var. aurella n., eliza n. und var. n. Nord- America; Ph. Fischer (•^) p 133-134 — Andromache n. Californien ; Hy. Edwards {^) p 50. Cauninda n. (Focillidae) Typus Remigia archesia Cr.; Moore (') p 190. Cirrhoedia Borjomensis n. Caucasien ; Romanoff p 61 Fig. Cleoceris viniinalis var. n. England; HarriSOn p 244. Cletthara hasalis n. Ceylon; MoOre (^) p 105 Fig. Corcohara Thivaifesü u. Ceylon; MoOre (') p 218 Figg. Corgatha renalis n. Ceylon; MoOre (') p 242 Fig. Cucullia improha n. Caucasien; Romanoff p 65 Fig. — n. sp. ? (nur die Raupe) Holstein; Tetens (^) p 159 — Teichii n. Argentinische Republik; Berg ("-) p 271. Daxata lautilla n. Bombay; SwInhoe (*) p 470. Delgamma n. (Dysgoniidae) Typus Naxia calorifica Walk.; Moore (^) p 168. Dianthoecia caesia Bkh. var. n. Caucasien ; Romanoff p 42 — magellana n. Pata- gonien ; Mabille p) p 64. Dichromia pullata n. Ceylon; Moore (') p 221 Fig. Discordia n. (Leucaniidae) evulsa n. Poona; Swinhoe (^) p 448 Fig. Dunira n. (Thermesiidae) Typus Thermesia scitula Walk.; Moore (') p 206. Durdara zonula n. Bombay; Swinhoe (^) p 469 Fig. Dysgonia Crameri n. (= Ophiusa Achatina Cram. , non Sulzer) Ceylon; Moore (^) p 177 Fig. — discalis n. Ceylon; Moore (^) p 177 Fig. Egnasia binorbiculata n. , scopigera n. , ocellata n, Ceylon; Moore (') p 194- 195 Figg. Emiychia arabica n. Aden; Butler (^j p 500. Epise)na Lederin., paenulata n. Caucasien; Romanoff p 44-45 Figg. Erastria futilis n. Kurrachee ; Swinhoe (') p 517 Fig. Ercheia zura n., zygia n. Poona; Swinhoe (^) p 465. Euperia samhuci n. San Francisco; Behr (') p 61. Fodinoidea maculata IX. Ankafana, Madagascar ; Butler ^^'-) p 198. Gesonia gemma n. Poona; Swinhoe (■*) p 469. Girpa fraterna n. Ceylon; Moore (') p 94 Fig. Gonitis propinqua n. Aden; Butler ('■^j p 497. Grammodes mirabilis n. Caucasien ; Romanoff p 78 Fig. Gyrtona phycisoides n. Ceylon; JVioOre (^) p 125 Fig. Hadena didyma KsTß . var. Struvei w. Sicilien ; Ragusa p 274, 299 — tetragona n. Magellan-Inseln ; Mabille (2) p 63. Hadennia n. (Herminiidae) Typus Bocana hypenalis Walk.; Moore (') p 236 — prunosa n. Ceylon ; iVJOOre (^) p 237 Fig. Helia lunifera Vi., figurata n. Ceylon; Moore (') p 238, 239. Heliothis juncea u. Bombay; Swinhoe (^) p 448 Fig. Herminia orthosiana n. Bombay, velifera n. Poona; Swinhoe ('') p 473 Fig. Hexamitoptera n. nom. statt Poeciloptera Pagenst. [siehe unten p 528]; Pagenstecher (') P 73. Hingula figurata n. Ceylon; IVIOOre (') p 199 Fig. Hyblaea puera Cram. var. n. Deccan ; Swinhoe (^) p 458. Hydrillodes insignis n. Aden; Butler ('-) p 500. Hypena mimicalis n., obstupidalis n. Poona, specularis n., vecordialis w. Bombay; Swinhoe (■*) p 471-472 Figg. — colombana n., biangulata n., cognata u. Cej'^lon ; Moore (') p 223, 224. Lagoptera bivirgata n. Philippinen; Snollen (*) p H Fig. ^2g Arthropoda. Leucania polemusa u. Pooua ; Swinhoe (^) p 44 7 Fig. Leucanitisu. sp. Kirghisen-Steppe : StandfuSS (^) p 2. Lithilcma n. (Deltoldae, nahe zu Gisira Walk.) ossicolor n. Melbourne; Rosenstock p 425. Lophoptera eostata w. Ceylon; Moore (') pl23 Fig. — Kheili n. Nias; Pagen- stecher (') p 30 Fig. Luperina mutica n. Caucasien ; Romanoff p 47 Fig. Macaldenia n. nom. (= Pasipeda Moore, non Walk.) Typus Hulodes palumha Guen.; Moore f') p 162. Mamestra variegata n. Algerien; Austaut (^j p 14 2. Marapana n. (Hypenidae) Typus Hypena raralis Walk.; Moore {^) p 227. Marimatha lactea n. Kurraehee ; SwinhoO (') p 522 Fig. — pura n. Poona ; Switl- hoe (f) p 4.5G Fig. Matella n. (Focillidae) Typus Egnasia aceingalis Walk.; MOOPG (') p 196 — caduca n. Poona; SwInhoe (*) p 470 Fig. Mestleta luniferaw.^ interrupta n.. multiguttata n. Ceylon; Moore ') p 209. 210 Figg. Miana falsa n. Yokohama; Butler ("*) p 132. Micra chalybea n., furia n., halux n. Kurraehee; Swinhoe ^^] p 519 Figg. Minucia n. nom. = Ascalapha Hb. = Ophiodes Guen. praeoccup.;; Moore ('' p 159 — prunicolor n. Ceylon; Moore ") p 1<»0 Fig. Myana sapora n., atromacula n. Kurraehee; Swinhoe (^] p 522, 523 Fig. Nahartha n. (Herminiidae, nahe zu ^^mna) Typus 5om«a scÄa/r/Msa/js Walk.; Moore (') p 234 — marginata n. Ceylon; Moore (') p 234 Fig. Nephelodes datanidia n. Japan; Butler (*) p 132. Nodaria cingala n. Ceylon; Moore (^) p 233. Ophiusa Olympia u. Poona; Swinhoe (^) p 466. Oraesia vagahunda n. Kurraehee; Swinhoe (') p 519 Fig. Orthosia mfrequens n. Kurraehee; Swinhoe (') p 517 Fig. — purilineaw. Pata- gonien, 7nollis n. Magellan-Inseln ; Mabille [^) p 62 — wii/ormis n. Quetta, Afganistan; Swinhoe (^) p 350 Fig. Othora aenea n. Kurraehee; Swinhoe (^) p 520 Fig. Üzarba itioarra n., mallarba n. Poona; Swinhoe (^) p 452 Figg. Pandesma denia n. Kurraehee; Swjnhoe (') p 520 Fig. Panilla n. ^Homopteridae) Typus Homoptera dispila Walk.; Moore (') p 93. Pantura n. 'Herminiidae) Typus Bocana ophiusalis Walk.; Moore (') p 247. Pasipeda satellitia n. Ceylon ; Moore (*) p 1^4 Fig. Pasira renalis n. Ceylon ; Moore (') p 250 — aenigmatica n., russa n. Poona, inscitia n. Bombay; Swinhoe (^) p 472, 473 Figg. Peregea supplex n. Poona; SwInhoe (*) p 452. Pinacia jnqnllalis u. Sumatra; Snellen ("i p 7 Fig. Pindara n. (Dysgoniidae) Typus Noctua illibata Fabr.; Moore (^) p 169. Plotheia lativitta n., griseovirens n. Ceylon; Moore (^) p 106, 108 Figg. Plusia corrusca n., alterna n. Colorado; Strecker (^l p 178. Poeciloptera n. (Subg. von Hypopyra Lawinda n. Nias; Pagenstecher (^) p 35 Fig. Potamophora Hageniin. Sumatra: Snellen ("j p 6 Fig. Prodenia evanescens n. (= retina H.-Sch. var. ?^ Caroline-Insel; Butler (') p 94. Protheodes veprecola n. Poona; Swinhoe (^ p 456 Fig. Remigia quaesita n. Bombay; Swlnhoo (^) p 468 Fig. — arefacta n. Kurraehee ; Swinhoe (') p 521 Fig. Rkizogravmia unilinea n. Poona; Swinhoe (*) p 452 Fig. Rhyncfdna pertrulgaris n. Poona; SwinhOO (*) p 471 Fig. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 529 Rivula flavonigra n. Kurrachee ; Swinhoe (^) p 522 Fig. — auropurpurea u. Nias ; Pagenstecher (^) p 42. Scopelodes satellitia L. ab. brunnean. (= Esper Fig. 169 : 7) Schweden ; Lampa p "6. Seiepa vitea n., sceptica n. Bombay, occulta n. Poona ; Swinhoe (*) p 460, 4 61 Figg. — strigiferan. Ceylon; Moore (^) p 103 Fig. Seneratiaw. (Thermesiidae) Typus Thennesia praecipua Walk.; Moore (*) p 202. Spadix vegefus n. Bombay; Swinhoe (^) p 4 75 Fig. Spaelotis comtscantis n. Chaman, Afganistan; Swinhoe {^] p 34S Fig. Stictoptera Richardin. Nias; Pagenstecher (^) p 29 Fig. Syjma astrigera n. Nikko, Japan; Butler (^) p 135. Taeniocampa incerta Hnfn. ah. pallida n. Stockholm, Schweden; Lampa p 72 — Sieversi n. Caucasien ; Romanoff p 58 Fig. Taramina n. (Hypopyridae ; = Entomogramma sect. 2 Guen.) Typus Entomogramma torsa Guen.; Moore (') p 153. Thalpochares uhei-osa n. Poona; Swinhoe (■*) p 457. Toxocampa moolla n. Poona; Swinhoe ("*) p 459 Fig. Triphaenopsis cinerescens n. Fujisan, Japan; Butler (■*; p 134. Xylophasia incognita n. Yesso; Butler (^) p 132. Zethes albiguttata n. Nias; Pagenstecher (^) p 40 Fig. — propinguus n. Caucasien; Romanoff p 75 Fig. — renalis u. Ceylon; Moore (^) p 194 Fig. Familie Euschemidae. Hazis ares Weym. = bellonaria (= subrepleta Walk.) Guen. var. ; Pagen- stecher ('). Phaeochlaena inaria n. Ecuador, ci?igulina n. Peru, aurantica n. Bolivia; Druce (^) p 5?. 5 -536 Figg. Familie Geometridae. Plötz (^) theilt diese Familie in 2 Familien Asthenina und Geometrae [genuinae] mit den Subfamilien Microniina, Urapterygina, Metrocampina, Geometrina, Meco- cerina, Fidoniina, Hazina, Oenochromina, Ennomina, Macariina, Hiberniina, Amphidasina, Boarmiina, Stellidina, Caberina, Palyasina, Melanchroina, Ligiina, Emplociina, Erateinina, Heliomatina, Hypochrosina , Ephyrina , Acidalina, Timandrina, Cimelina, Lythrina, Hedylina, Hydreliina, Eupitheciiua, Larentiina, Anaitina. Meyrick (■') fing 60 n. sp. auf Mt. Kosciusko in Australien (doch nicht beschrieben). Derselbe (^j liefert Nachträge zu seiner Bearbeitung der neuseeländischen Arten und theilt die Familie in 5 Gruppen: Acidaliadae, Larentiadae, Boletobiadae, Lyrceidae und Boarmiadae ; Fidonia Edmondsi Butl. aus Chili ist nahe verwandt mit Cephalissa siria Meyr. und wahrscheinlich auch eine Cephalissa; Epimecis dibapha Feld, aus Chili ist nahe verwandt mit der neu- seeländischen Pasithea brephos Walk. ; Harpyia albicans Walk, aus Süd-Africa kommt nahe zu Declana. Waterhouse (') liefert Figuren von Lagyra megaspila, Anisodes semilaria^ A. pallivittata, Geometra dentisignata, G. vittata und Cimicodes cruentaria Moore und Romanoff von Phorodesma smaragdaria Fabr. var. prasinaria Ev., Acidalia roseofasciata Chr., Pellonia auctata Stgr. und Pellonia Sieversi Chr. Christoph (') bespricht und bildet ab : Boarmia cocandaria^sch., Eusarca pello- nan'a Stgr., Eusarca vasiaria Chr., E. euprinaria Chr.; Lithostege [Anaitis] excel- sata Esch. (gehört besser zu Lithostege).^ Eupithecia Gueneata Mill. var. separata Stgr. und aberr. -— Besonders besprochen werden: Abraxas marginata L. ab. naevaria Hb. Bohatsch ; Acidalia Schöyeni Schn. (gute Art) Sandberg (^ ; Acidalia Zool. JaLresteiiclit. 1&S5. II' -^a cQA Arthropoda. luteolaria Const. , A. robiginata Stgr., A. asellaria H.-Scli. ab. ruminata Mill. IVlil- liere (^) Figg.; Acidalia flaveolaria Hb. (GeschlechtsverscMedenheiten) , A. nu- midaria Lucas (gute Art), A.ßaccidaria Z. (gute Art) Bohatsch; Acidalia nigro- jnmctata Hufn. Sepp (Figg.); Cidaria sociata Bkh. und varr. Sintenis (') (Figg.); Cidaria pupillata Thb. (? = funerataBh.) und C.ßexuosaria Boh. nach den Typen wieder beschrieben Lampa; Cidaria funerata gute Art) beschrieben Bohatsch; Cidaria lucidulata Walk, ist eine Chry solar entia nach Rosenstock; Entomopteryx amputata Guen. 2 beschrieben Pagenstecher ('); Euphanessa mendica Walk, ge- hört zu Geometridae nach Hulst ", und Riley (-,;; Geometra immaculata Thb. wahrscheinlich eine Phorodesma, ausführlich beschrieben nach dem Originalexem- plare Lampa; iiWes /wsmna Hb. verschiedene Art Milliere ('); Melanthia undata Girard (•'';; Thamnonoma acquiaria Mill. (J' Milliere ('; (Fig.). Synonymisches. Meyrick (-) liefert folgende synonymische Bemerkungen und Verbesserungen zu seiner Monographie der neuseeländischen Geometriden : Acidalia repletaria Walk. = Ac. attributa Walk. = Ac. rubraria Doubl.; Acidalia pulchraria Walk, und Butl. (non Doubl.) = Hijypolyte rubropimctaria Doubl.: Eurydice cymosema Meyr. = Eur. rufescens Butl.; Eurydice rufescens Butl. nicht = Harpalyce megaspilata Walk.; Stratonice catapyrrha Butl. u. Meyr. = Coremia glyp hica ta Gnen. = Stratonice euclidiata Guen.; Coremia cmteitff Walk. = Fhiba- lap teryx parvulata Wa\k. = Phibalap teryx eupitheciata WaXk. = Scotosia himierata Walk. = Scotosia subitata Walk. = Scotosia denotata Walk. = Coremia inductata Walk. = Pasiphila bilineolata y^sX^s..; Sauris misiata Feld. = Cidaria collectaria Walk. = C. transitaria Walk. = C. iticlinataria WaXk. = C. tipulata Walk. = Tato- soma agrionata Walk..; Asjnlates euboliaria Walk. = Arsinoe subochraria Doubl.; Cidaria chaotica Meyr. = Cid. anV/aButl.; Lar entia psamatod es Mqjv. = Panagra venipunctata Walk. = Coremia plurimata Walk. = Lar entia lucidata Walk.; Larentia petropola Meyr. = Lar entia subobscurata Walk. [Scotosia); Lrrentia diffu- saria Walk. = L. cinerearia Doubl.; Fidonia enysii Butl. nicht = Pasithea brephos Walk.; Statira homomorpha Meyr. = Statira enysii Butl. [Fidonia]; Ennomos Mstona Walk. = Lyrcea alectoraria Walk.; Psaudocoremia confusa Butl. = Ps. melinata Feld.: Chlenias verrucosa Feld, nicht - Declanaßoccosa W-^\k.; Declana crassitibia Meyr. rf = Chlenias verrucosa Feld. = Declana junctilinea Walk.; Declana crassitibia Meyr. Q. = Amphitape crassitibia Feld. = Ipana leptomera y^aXk.] Amastris encaustal^QjT. = Sestrafusiplagata WaXk. = Cidaria obtruncata Walk. = Cidaria ßexata Walk. = Lozogramma obtusaria Walk. = Amastris hume- raria Walk. [Macaria); Stratocleis streptophora Meyr. = Itama cinerascens Feld. = C/ialastra pelurgata Walk. — Abraxas IjQach. = Calosjnlus Hb., Acidalia aureo- laria Hb. = A. trilineata Scop., Ac. canaliculata Hochw. = Ac. immorata L. Rogenhofer (^); Acidalia decor ata ^k\i. fl794) = Ac. violata Ihb . (17S4) Lampa; Acidalia Megearia Oberth. (1881) = Reaumuraria Mill. = pratana Fabr., Ac. flaveolaria Tr., non Hb. = ßlacearia H.-Sch., Ac. subherbariata Rößl. = miserata Stgr., Ac. carnearia Mann (1885) = infirmaria Rmb. (1833), Ac. Seeboldiata Rößl. (1877) = eugeniata Mill., welche zur Abtheilung A. 6. a. 2.00 in Stau- dingers Catalog gehört, Ac. Pecharia Stgr. = elongariaYiXab. var., Ac. praeustaria Mann. = holosericata Dup. var. Bohatsch ; Amphidasys Tr. = Eubyja Hb., Anaitis Dup. = Carsia Hb., Bapta Steph. = Lomographa Hb. Rogenhofer (^); Barsine Meyr. = Boarmia Tr. IVleyrick (^) : Biston Leach = Apocheima Hb. Rogenhofer (^); Boarmia biundularia Borkh. = B. crepuscularia S. V. var. Bo- hatsch; Bupalus Ij^ach = CatographaBh., Caber a Tr. = Deilinia Rh . , Cheima- tobia Steph. = Operophthera Hb., Chesias Tr. = Eucestia Rh. Rogonhofer (^); Cidaria unidenta^-ia Haw. = ferrugata Gl. var. (liefert diese und wird aus dieser erhalten) Sintenis ('); Cidaria conßxaria H.-Sch. = spadicearia S.V. aberr., C. sol- 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 531 daria Tm'a.ü = canditlata Scliiflf. var. Bohatsch; Cidaria funerata Hb. = (?) /)m- pillata Tlib., subfasciaria Boh. = (?) albulata Schiff var., C. decolorata Hb. = ßavofasciaria Tlib. ^1792), C. lutearia Fabr. Hb. = ßavicata Tlib. (1784), C. iynpluviata Hb. = trifasciata Thb. = autumnalis Ström (1783), C. derivata Bkh. = separata Thb. (17S7) = nigrofasciaria Goeze (1781) Lampa; Ellopia Tr. = TherinaBh., Epione Diip. = Euchlaena Rh . Rogenhofer (') ; Emnelea JsiYd. ver- griffen durch Eumelea Hb. Zutr. Snellon (^, ; Eujnthecöa digitaliaria Dietze (1872) = pulchellata va.!'. pt/reneata Mab. (1871), littorata Coust. — ariemisiata Const. = ? santolinata Mab. Bohatsch; EupitAecia centaureata Fabr. = oblongata Thb. Lampa; Eupithecia Curzoni Gregs. = nanata var. nach Tutt (•^) = satyrata nach HodgkinSOn (2), eigene Art aber nach Gregson (^); Eurymene T>w^ . = Flagodis Rh. Rogen- hofer ('m Geometra thymiaria Thb. = Pseudoterpna pruinata Hufn., G. vittata Tlib. = Acidalia mbiginata Hufn., G. denticulata Thb. = Zotiosoma annulata Schulze, G. marmoraria Thb. = Biston stratarius Hufn., G. vitiaria Thb. = (?) Boarniia ej'nc^ana Schiff. , G . viduaria 'QVh. . = Boarmia angularia Thb. (1792), G. pictaria Thb. = B. lichenmiaRwin.., G. glabraria Rh. = teneraria Rh. = Boarmia jubata Thb. (1788), G. ptmctularia Rh. = Boarmia scopularia Thh. (1784), G. obfusca- na Hb. = Gnophos myrtillataThh. (1792), Halia fuscaria Thh . = (?) H. icavaria L. var., G. quadrifasciaria Thh . = Ort/iolitha plumbariaFahr., G. obliquata Thb = Mtsotype virgata Hufn., G. zonata Thb. = Lobophora halterata Hufn. aberr., G. crenataThh. = Scotosia transversata Hufn. Rott., G. reticulaki Thh . = reticulata Auct. (= dictyides Wallengr.), G. cuspidaia Thb. = Cidaria fulvata For&t., G. simulata Rb. = Cidaria cognata Thh., G. variata Thh. = Cid. i runcata Ru{n., G. deleataria Thh. = Cid. viridaria Fahr., G. diluiata Bkh. = Cid. 7iebulata Thh. (1784), G. transversata Thb. = Cid. lugubrata Stgr. und G. strigata Thb. = Ci- daria obliterata Hufn. Lampa; Hemerophila vestita Walk. = Boarmia attributa Walk, c^ Rosenstock; Hybemia Latr. = Erannis Hb., Macaria Gurt. = Semio- thisa Rh., Äletrocampa hatv. = Eudalimia Rh., Numeria Y)\\]) . = Anagoga Rh., Odezia Boisd. = Baptria Hb., Odontopera Steph. = Gonodontis Rh., Pellonia Dup. = Rhodostrophia Hb., Pericallia Steph. = Hygrochroa Hb., Phalaena circularia Thb. = Hygrochroa 'syringaria L., Psodos horridaria Schiff. = alpinata Scop., Ps. alpinata S. V. und Hb. = quadrifaria Sulz. RogenhofOP (^); Rhopalodes lobophoraria Ohevth. = Eh. patrata 8ne\\. Snellon ('") ; -R«. interrupta Feld. [Crambus]. — Acrobasis ru- brotibiella F . R. = verrucella Hb. = tumidana 8. V. Ragonot (^^;; Ampycophora 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 535 Meyr. = Etiella Zell. Meyrick {% Anerastia farrella Curt. = Epischnia Boisduva- liella Guen. (1845) Ragonot (^■^); Anthophilodes plumbiferalis Chr. = A. haphialis Led. var. Christoph (^i; Botys lujmlina Stt. = lupulinalis Guen. (non Clerck?) = silacealis Hb. = nuhilalis Hb. Robin & Laboulbene; Botys albidalis Walk. = B. nitetisalis Walk., Botys venosalis Walk. = Ehulea catalaunaUs Diip. Butlor ('^) ; Botys varialis Brem. = B. zecdis Guen., B. basipunctcdis Brem. = B. midtiline(dis Guen. Oberthiir (^); Diasemia spilonotalis 8nel\. = D. grammah'sDoxihl. Snellen "i ; Diptychophora praematurella Meyr. = D. oc/iracealts Walk. [Cataclysta] Rosen- Stock; Ebidea Zelleri Brem. = Hyalttis luctuosalis Guen. OberthÜr,(2i ; Ephestia xanthotricha Stand. = ßcellaT)o\\g\. = calidella Guen. (1845). E. passidella Barr. = E. cahiritella Zell. (1867), E. zeae Fitch = Plodia interpunctella Gudn., E. lugdu- nella Mill. = Cryptoblabes bistriga Haw. RagOnot ('^); Epischnia ? cinerella Mill. (non Dup.) = Ancylosis cinnamomella Mill. = depositella Zinck. = Chymnancycla canella S. V. Ragonot (^^); Eretria obsistalis Snell. = Sceliodes mucidalis Guen. = Eretria cordcdis Doubl. [Margaritia] Snollen (^); Eucarphia crephaeella Meyr. = E. tritcdis Walk. var. Meyrick (•'j ; Eudorea portlandica Dale = E. frequentella var. Stainton (^); Eurrhyparodes stibialis Snell. = accessa/ü Walk. = bracteolcdis Zell. Meyrick (^); Euzophera Zelhrella Sorh. = Trachonitis Pryerella Vaugh. = Myelois ceratoniae Z. Ragonot(^'^); Homoeosoma nehdella Wood F 1451 (nouS. V.) = binaevella Hb., H. saxicola Vaugli. = H. nimbella var., H. senecionis Vaugh. = H. cretacella Rößl. (18G6) Ragonot (^^J; Hygraula Meyv. = Paraponyx Meyrick (^); Marasmia cicatricosa Led. = Botys convectalis Walk. = B. suspicalis Walk. = B. neoclesalis Walk. = Marasmia creonalis Walk. Butler ('') ; Molybdantha ab- negatalis Walk. = plumbalis Gnen. = tricoloralis Zell. Meyrick ['^]\ Myelois de- serticola Stand. = M. delicatella Möschl. var. Christoph '})■■, Myelois cribrum Auct. (non S. V., welche = Emydia cribrum L.) = M. cribrella Hb., 31. artemi- siella Stt. = incanella Eversm. = Euzophera cinerosella Zell., M. epelydella Zell. = M. marmorea Haw. RagOnot (^^; ; Nephopteryx undulatella Clem. = propriella Walk. = Heterographis oblitella Zell., Pempelia albariella Knaggs = Nephopteryx Davisellus Newm. = N. albilineella Stgr. = N. ulicella H.-Sch. = N. genistella Dup., Pempelia carnella L. = Salebria semirubella Scop., Pempelia perornatella Guen. = criptea Haw. = criptella Hb. = dilutella Hb. = P. ornatella S. V., Pem- pelia dilutella Stt. (non Hb.) = adornatella Tr., Pempelia spadicella Hb. 22G = janthinella Dup. T 281 F 2 = Salebria fusca Haw., Pempelia rhenella Hein, (non Zinck.) - rhenella var. H.-Sch. = Nephopteryx hostilis Steph., Phycita cristella Steph. = legatella Steph. = legatea Haw. = roborella S. V. (nom. catal.) = Phycita spissicella Fabr. Ragonot ('^); Pinacia ocularis Feld. & Rog. ? = Spilomela om- matalis ^neW. Pagenstecher (^) ; Piotiea incomalis Gnen. = Godara comalis Gxaen. Q Meyrick ("); Sameodes vespertinalis Saalm. = trithy r alis ^neW. — meridionalis Walk. = sidealis Walk. = lepidalis Walk. = pipleisalis Walk. = cancellalis Zell. Meyrick (''); Scirpophaga exsanguis Meyr . = Tipanaea patidella Walk. Meyrick^^ ; Scoparia Zelleri und scotica = Sc. cembrae varr., Sc. atomalis = Sc. ambigualis var., Scoparia ingratella = dubitalis var.. Sc. gracilalis = Sc. alpina var. Briggs; Scopula ? subjectalis Walk. = Noorda blitealis Walk. Butler (- : Zophodiopsis hyaenella Fromholz = Metoecis lepidocerella Mab. (1879) Ragonot '^) . Acharana n. Typus Botys otreusalis Walk.; Moore (^) p 285 — similis n. Ceylon; Moore (i) p 2S6 Fig. Acrolepia unicolor n. Schlesien: Wocke (*) p 59. Anerastia [Mesodiphlebia] trinotella u. Argentinische Republik ; Berg ^2) p 279. Anydraida n. (Hydrocampidae) für Cataclysta glycerialis Walk, und C. drusialis Walk.; Meyrick (C) p 427. ^35 Arthropoda. Bacotoma ii. Typus Botys abjungalis Walk.; Moore (^) p 282. Bocchoris n. Typus Botys inspersalis Zell.; Moore (^) p 271. Botis inornatalis n. Florida; Fernald C) p 57 — qut7iquemaculalis n., murinalis n., ßavoviolalis n. Nias; Pagenstecher (^) p 54-56 — aurithoracalis n. Achal- Tekke; Christoph (') p 145 Fig. Cataclysta ornata n., cuneifera n., angulata n. Ceylon; Moore (^) p 299, 300 Figg. Catamola capnoins y^.. N-S-Wales ; Meyrick \^\ p 439. Chilo concolorellus n., terrestrellus n. Äcbal-Tekke ; Christoph ('] p 149, 151 Figg. Chrysauge unicolor u. Argentinische Republik; Berg (-) p 274. Cledeobia infuniatalis Erscli. var. n. Aclial-Tekke ; Christoph (') p 141. Commotria n. invenustella n. Argentinische Republik; Berg ("^) p 278. Coptobasis fraterna u. Ceylon; MoorO (^] p 292 Fig. Corcyra n.- (Pbycidae) Typus Melissoblaptes cephalonica Stt.; Ragonot i}"^) p 23. Cotachena u. Typus Botys histricalis Walk.; MoorO ■') p 275. Crambus biradiellus u. Magellan-Inseln ; Mabille (^) p 70 — zonellus n. Kurrachee; Swinhoe (^) p 528 Fig. — valUcolellusn. Sardinien; Costa p 252 — graphellus n. Golfe luan; Constant (^) p 207 Fig. — zeellus n. Virginien, Illinois, hul- stellus n. Texas; Fernald (^) p 55, 56 — catacaustus n., tritonellus u. , ephorus u., crenaeus n., enchophorus u., diplorrhous n., pedias n., paraxenus n., sophro- nellusn., oncobolus n. Neu Seeland ; Meyrick f^j p 134-13S — Kobelti n. Al- gerien; Saalmüller {^) p 335 — zeellus n. Illinois; S. A. Forbes (1) p S92. Ctenopseustis n.: *MeyrJck ['^-] . Danaga n. Typus Desmia concisalis Walk.; Moore (^) p 272. Diptychophora selenaea n., holanthes n., epiphaea n. Neu-Seeland; Meyrick ("*) p 131-132. Drymiarcha n. (Pyralidina) exanthes \x. Sidney; IVleyriok i^^) p 441, Eurycreon homophaea n. N-S-Wales; Meyrick [^'] p 449 — perplexalis n. Texas; Fernald (ß) p 57 — Pechin. Algerien; Baker [^) p 268. Eurrypora urticata L. var. Holland; Tuinen p 2. Euzophem conicolella n. Meeresalpen; Constant (^) p 209 Fig. Gadessa u. albifrons n. Ceylon; Moore (^) p 278, 279 Figg. Harpagoneura n. coinplexa n. Nukufetau, Ellice Inseln ; Butler (^) p 242. Hedylepta straminea n. Ceylon; Moore (^) p 278. Heterographis n. (Phycidae) für sabulosella Stgr., terstrigella Chi . u. and.; RagOnot (1-' p 31. Hornigia n. Typus Melissoblaptes anellus S. V.; Ragonot f^'^) p 21. Hyalobathra u. (Botydidae) archeleuca n. Sidney; Meyrick (^] p 445. Hydreuretis n. (Hydrocampidae) euryscia n. Victoria; Meyrick {^) p 435. Hydriris n. (Botydidae) chalybitis n. Queensland; Meyrick (^') p 444, Hygraulan. (Hydrocampidae] Typus Paraponyx nitens Butl. ; Meyrlck (■*) p 129 und * Meyrick i^V Vergl, Meyrick C'^] . Hypotia vafera n.^ rubella n. Kurrachee; Swinhoe (^) p 523 Figg, — spectosalis n. Achal-Tekke; Christoph (') p 141 Fig. Lasiocera antelia n. Süd- Australien ; Meyrick (") p 455. Letchena n. Typus Pyralis thyralis Walk.; Moore (^) p 257. Leucinodes opalina n. Ceylon; Moore (^) p 289 Fig. Lonchodes ceramochra -Q.. Queensland; Meyrick (^) p 443, Mabra n. Typus Asopia eryxalis Walk.; MOOrO (^) p 280. Margaronia Woodfordii n. Tapetewea, Gilbert Inseln ; Butler (^) p 241. Mecyna rhodochrysa n. Sidney; Meyrick C') p 4 47. Mella Yerburün. Aden; Butler (2) p 502. Metasia olbienalis Gu6n. var. aegitnalis n. Cannes; MillierO (*j p 20. 8, Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 537 Myriostephes heliamma n. Queensland; Meyrick (^) p 448. Myriotis -a. (Botydidae) Ty])Vii Botys ptoiisalis Walk.; Meyrick ('') p 446. Nacoleia costisignalis n. , contingens n. Ceylon; Moore (') p 273 Fig. Niaccaba deleta n. Ceylon; Moore (') p ^^04 Fig. Orobena Grumtni n. Achal-Tekke; Christoph (^) p 147 Fig. Orocrambus n. (Crambidae) melampetrus n. Neu-Seeland; Meyrick (^) p 133 und * Meyrick (^^j. Oxychirotan. (Oxychirotidae n. fam.) ^y^ws, paradoxa n. Sidney; Meyrlck (^) p 438. Paraponyx dicentran., niyinan., marmorearx. Queensland; MeyrJCk C^) p 431-434. Pelecyntis distorta n. Ceylon; Moore (') p 270 Fig. Pempelia Hella u. Kurracliee; Swinhoe (^) p 529 Fig. — cortella n. Corsica; Constant (i) p 208 Fig. Pyralis uberalis n. Kurracliee; Swinhoe (') p 523 Fig. — imbecilis n. Ceylon; Moore (i) p 264. Ravanoa n. Typus Zebronia bilineolalis Walk.; Moore (') p 284. Rhodoneura denticulosa n. Ceylon; MoorO (') p 267. Rinecera n. (Botididae) mirabilis n. Caroline Insel; Butler (') p 95. Salebria minuiella u. Ceylon; Ragonot (") p 150. Scoparia anthracias n., chiasta n., eumeles n., aphrodes n., epicryma n., syntaracta n., synaptan., homalan., ereiJiitis n., 2)energa n., gotnphota u., oreas n., phi- ler ga n., chlamydota n., chimeria n., dinodes n., acharis n., cymatias n., mi- crophthalma n . , hemicycla n., ergatisn., criiica n., anaplecta w., spelaea n., cha- racfan., melanaegis u., trapezoph,ora\i., philetaera u., periphanes n., cataxesta n., tetracycla n., chalicodes n., leptalea n., psammitis n., epicomia n., acompa n , acropola n., manganeutis n., crypsinoa n., axenan., steropaea n., elaphra n., paltomacha n. , deltophora n . , panopla n. Neu-Seeland; Meyrick ("'; p 74-107 — protorthra M. Sidney; MeyrJck C*) p 450 — pusilla w. Melbourne; Rosen- stOCk p 427. Scopida palmalis n. Kurracliee; Swinhoe (^) p 525 Fig. Sorocostia n. (Crambidae) Typus Eromene ? vetustella Walk.; Rosenstock p 435. Spermatophora Schini n. Argen tiu. Republik; Berg (-; p 275. StemmatopJiora castanoptera n. Ceylon; MoorO (^j p 260. Stereocopa n. (Botididae) Typus Gabrisa scoparialis Walk.; Moyrick (^) p 449. Talanga n. Typus Oligostigma sexpunciata Moore; Moore (') p 300. Thinasotia termia n. Queensland, pedionoma n. N-S-Wales, panteucha n. Mount Lofty, Süd-Australien, megalarcha \\. N-S-Wales; Meyrick [^] p 452-454. Thylacoptila n. (Phycidae) jößz^rosemß n. St. Vincent; Meyrick [^^] p 105-106. Tyspana n. vitessoides n. Ceylon; Moore (') p 256 Fig. Vitessa Rama n. Ceylon; Moore (') p 256 Fig. Xeroscopa philotiephes n., encausta n., petrina u., cyanieuta \i., astragalota u., har- palea n., niphospora n., apheles n., aspidota n., nomeutis n., epicremna n., legnotan., octophora n., asterisca n., leucogramma n. Neu-Seeland; Meyrick (^) p 110-119. Xesiula mi7-aculosa n. Amur; Snellen (^) p 199 Fig. Zophodia cactorum n. Argentinische Republik; Berg (-) p 276. Familie Tortricidae. Plötz (^) tlieilt diese Familie in die Tamyrina und Tortricina. Barrett (^) be- spricht alle englischen Arten, welche einen Costalumschlag besitzen, und zeigt, daß diese Bildung sowohl als Familien- wie als Gattuugsmerkmal ganz untauglich gßo Arthropoda. ist; als Artenkennzeichen läßt er dasselbe jedoch zu, wenn es auch sehr schwierig ^möglich?) ist, einige Arten von Dichrorampha anders als durch den Umschlag zu trennen (so z. B. finden sich unter den sogenannten »Arten« saturnana^ tana- ceti und phmibagana Formen sowohl mit als ohne Umschlag ; sind diese verschie- dene Arten ?). Auch Eupoecilia maculosana hat einen Umschlag [vergl. oben p 475]. Meyrick (^) gibt einen neuen Unterschied zwischen Tortricidae und Grapholithidae (jene mit, diese ohne Uncus des (^), beschreibt das q^ von »Har- mologm zatrophana Meyr., welche eine Proselena ist, und beschreibt nochmals die Gattung Epalxiphora Meyr. Christoph (') liefert Abbildungen von Oxypteron impar Stgr. und Conchylis Zellen Chr. ErSChoff bespricht und bildet ab seine schon beschriebenen Arten: Tortrix excentricana (= inopiana Haw. lichte Var. ?j, Cheimatophila 2}raeviella, Cochylis pistrinana , Fenthma enervana, Grapholitha aha- cana , G. sub terminana imd Phthoroblastis dorsilunana. *Hoffmann \-) bespricht Fhthorohlastis Trauniana Schiff, und regiana Z. und Girard (' ] Tortrix viridana L. — Dichrorampha herhosana = tanaceti Sit. (vera), D. senectana = tanaceti Stt. Q, D. tanaceti AViCi. = D. safumana Warren (^). — Vergleiche auch Sor- hagen [K ^). Cacoecia alopecana n. Neu-Seeland; Meyrick {'") p 147. Carpocapsa molyhdana n. Meeresalpen; Constant (^) p 214 Fig. Cochylis inulana n. Meeresalpen; Constant ;^j p 212 Fig. — tmicolor n. Algerien; Baker (^) p 268 — margaritana Hb. var. n. Achal-Tekke ; Christoph (^) p 156. Ctenopseustis n. (Tortricina) Typus Paedisca ohliquana Walk.; Meyrick (^j p 146. Grapholitha aspidiscana Hb. var. n. Achal-Tekke; Christoph (^) p 157 — gram- mana n. Meeresalpen; Constant (') p 213 Fig. Harmologa latmnana n., siraea n. Neu-Seeland; Meyrick [^) p 145. Heterocrossa cryodana u., epomianan. Neu-Seeland; Meyrick (^) p 148, 149. Proselena elephantina n., eremanä n. Neu-Seeland; Meyrick i^) p 143, 144. Pyrgotis eudorana n. Neu-Seeland; Meyriok ('^j p 143. Retinia turionana L. var. n. England; Hodgkinson (^j p 321. Sciaphila sedana n. Dauphine ; Constant f^) p 211 Fig. Steganoptycha Luedersiana n. Hamburg; Sorhagon (^j p 264, 284. Tortrix podana ^f var. London; Barrett ('**) p 137. Familie Tineidae. Plötz [^] theilt diese Familie in 3 Gruppen mit 17 Familien; die Gruppen sind 1. Canephoridae (mit Canephorina und Talaeporina) , 2. Tineae (mit einer unbe- nannten Familie , umfassend die Chimaerina , Typhoniina , Ochsenheimerina, Tineina und Adelina ; ferner mit den Familien Hyponomeutina, Plutellina, Exa- petina und Gelechina, Acrolepina, Glyphipterygina, Argyresthina, Gracillarina, Coleophorina, Elachistina, Lithocolletina, Lyonetina, Nepticulina) und 3. Micro- pterygidae (mit Micropterygina . Meyrick (^j setzt seine Bearbeitung der Oeco- phoriden Australiens fort, indem er die Gattungen Brachyneniata 1 n., Microbela 3 n.. Heterozyga 1 n.. Oxythecta 6, 4 n., Crepidosceles 2 n. und Ocystola 36, 34 n. beschreibt. Christoph (^) bildet Teleia tigrina Chr. und Metanarsia modesta Stgr. ab. Snellen (^^) bespricht die Unterschiede zwischen den Tineideu und Sesiiden. Vergl. ferner Sorhagen (^ ^) . Hagen bespricht die übrigen Typen im Museum zu Cambridge ; Tischeria heliopsisella Chamb. ist kaum eine Tischeria, Elachista bicristatella Chamb., E. concolorella Chamb. und E. parvipulvella Chamb. sind keine Elachista ; Laverna coloradoella Chamb. und L. gleditschiella Chamb. gehören nicht in die Gattung Laverna. — Besonders besprochen werden : Anthoe- cia divitiosaWa\k. ist Qme Hypertropha Meyr. Rosonstock; Chimahacche cinderella 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. B. Faunistik und Systematik. 539 Newm. gehört in die Gattung Agriophara Rosenstock; Choregia Zell, und ihre Arten besprochen Snellen (^j; Coleophora ßavaginella Stainton (^^); Coleophora subg. Metallosetia Steph. (Englands 5 sp. besprochen' Stainton(*j; Coryptilum tryphaenoides Suell. Pagenstecher (^) 'Fig.); Cryptophasa transversella Snell. ist eine Tortricomorpha Snellen (•') ; Cyme "l orhicularis Feld, vielleicht eine Adelo- morpha Snellen (•*;; ElacMsta *Frey; GeUcMa rumicivorella'MiW. IVIilliere('); Gly- phipteryx Hmvorthana Steph. Sorhagen (^j; Goniodoma verschieden von Coleophora Constant (2), Coverdale (-) (Figg.]; Hyponomeuta mali7iellus BarreW [^r, Litho- colletis corylifoliella Haw, und L. hetulae verschiedene Arten , L. quinqueguttella Stt. und varr. besprochen Sorhagen (^j; Nothris Umbipunctella Stgr. Milliere (^) (Fig.); Pancalia Leine enhoekella und Latreillella Stainton {^) (cf > Q einer Art ?) ; Tinea comptella Walk, ist keine Tinea, sondern kommt nahe zu Butalis Rosen- StOCk; Ypsolophus ? tricolor Feld, ist eine Ceratophora Snellen (^') (Fig.). Synonymisches. Badera nobilis Feld.&Rog. = ? Choregia pronubana Snell. Snellen (9); Batrachedra clemensella Chamb. = B. striolaia Zell. Hagen; Laverna albo- capitella Chamb. = L. Murtfeldtella Chamb. = griseella Chamb. Hagen; Lita taba- cella Rag. ? = i. solanella Boisd. OlivJer; Lithocolletis argentißmbriella Chamb. ? = longestriata Frey , L. atomariella Zell. '? = hamadryella Clem. , L. quercetorum Frey - Fitchella Clem.. Chamb., L. Hageni Frey == L. necopinusella Chamb. Hagen; Nematois fascidla'M.oi^cXx. = aurifera'QwH. Snellen (-^j ; Neptticula aucu- pariae Frey nicht = N. Nylandriella Tengstr. Warren (-) ; Oeta impariguttella Zell. = Atieva brucea Moore Snellen ('-',; Oecofhora co7itiexella Wa\k. = Oxythecta acceptella Walk. [Oecophora) (? = ? Cryptolechia abstersella Walk.) IVleyrick (^j ; Philobota bimacidana Donov. , Meyr. = Philobota fascialis Fabr. RosenstOCk; Scintilla Guen. = Syblis Guen. = Oeta Grote = Atteva Moore Snellen (0) . Adela chrysolamprella n. Melbourne; Rosenstock p 438. Adelomorpha n. Ritsemae n. Celebes ; Snellen (-) p 32 Fig. Agriophara n. (Cryptolechiidae) cinerosa n., diminuta n. Melbourne; RosenstOCk p 439, -140. Argijrostola n. nom. (statt Argyritis Hein., non Hübn., Walk.); Berg (^) p 272 nota. Batrachedra dimidiella n. Celebes : Snellen [^) p 35 Fig. Blabophanes trimaculella n. Celebes; Snellen (^) p 21 Fig. Blastobasis concretella n. Celebes; Snellen (•') p 34 Fig. Brachynemata TL. cingulata Ji. Queensland, N-S- Wales ; Meyrlck {^) p 104 5. Butalis serella u. Golfe Juan, focellan., mediella n. Corsica ; Constant (^) p 11- 13 Figg. — vitilellan. Achal-Tekke; Christoph {^) p 163 Fig. Cerostoma parenthesella L. var. n. Achal-Tekke; Christoph (i) p 158. Choregia striana n., basalis B. Celebes; Snellen ('*; p 17, 18. Cleodora invisella n. Corsica; Constant (^) p 257 Fig. Coleophora squamella n. Gascogne, macroUella n. Meeresalpen, albicella n., campho- rosme^/ß n. Golfe Juan ; Constant (') p 6-9 Figg. — ^mcfonW/a n . England ; Coverdale (^) p 225 — amethystinella\s.. Cannes; Ragonot (''^j p 167 — palu- dicolavL. Shoeburyness, England; Stainton (^J p 9. Crepidosceles n., iostephanan. Brisbane, exanthema u. Süd- Australien ; Meyrick (^) p 1056-1057. Cryptolechia urugtiayensis n. Uruguay; Berg (^) p 280. Depressaria prostratella n. Cöte d'Or, cervariella n. Süd-Frankreich ; Constant (1) p 215, 251 Figg. Eulechria leucopsina n. Melbourne; Rosenstock p 441 Eig. Gelechia clerica n. Melbourne; Rosenstock p 438 — tetragonella n. England; Stainton (9) p 99. 540 Arthropoda. Glyphypteryx argyroguttella n., Gianelliella n. Turin; Ragonot (^) p 56. Hapsifera riigosella n. Celebes ; Snellen (0) p 20 Fig. Heliozela Hammoniella n. ? (nur die Mine) Hamburg; Sorhagen (') p 337 und Sorhagen (3) p 338, 339 Fig. Heterozyga n., coppatias n. N-S-Wales ; Meyrick (i) p 1048, 1049. Lita gallicella n. Meeresalpen; Constant (') p 253 Fig. Lithocolletis chrysella n. Meeresalpen; Constant (^) p 13 Fig. — Anderidae n. England; W. H. B. Fletcher (2) p 40. Metanarsia jujictivittella n. Acbal-Tekke ; Christoph (') p 161 Fig. Microheia epicona n. Süd- Australien, allocoma n. mit var. a. n. N-S-Wales, mono- dyas n. Queensland; Meyrick ('j p 1U46-1048. Nematois xanthohasella n. Celebes; Snellen ('^) p 23. Nepticula Dewitziella n. Hamburg; Sorhagen (') p 347 [ohne Beschreibung] und Sorhagen (3) p 284 — trifoliin. ? Hamburg; Sorhagen (^) p 347 [ohne Be- schreibung] — n. sp. ■? England ; Sang (^) p 138. Ocystola n. (37 sp., 35 n.), h&micalypta n. Melbourne, thymodes n. Süd-Australieu, gnomican. N-S-Wales, thiasotis n. Sydney, hemisema -q. . N-S-Wales, oxytora n. Brisbane, malacella n. Sydney, isarithma n. Tasmanien, acroxantha n. N-S-Wales, anthera n. Sydney, callista n. N-S-Wales, tyranna n. Süd-Australien, enoplia n. Port Lincoln, Süd- Australien, coniata n. , «yeZaea n. Tasmanien , psamat/iina n. Sydney, milichia n. N-S-Wales, protosHcha n. Queensland, euanthes n. Adelaide, placoxantha n. N-S-Wales. mesoxantha n. Sydney, pyramisn., acrobaphes n., illuta n. N-S-Wales, lithophanes n. Tasmanien, monostropha n., homoleuea n. Sydney, chionea u. Süd- Australien , glacialis a., crystallina u. Süd- Australien, diclethra n. Sydney, niphodesma n. Queensland, trilicella n. Sydney, thalamepola n. N-S-Wales, 7ieurota n. Queensland; MeyrJCk (') p 1058-10S2. Oecophora fuscifrontella n., Ragonotella n. Corsica : Constant (^) p 262 5 Fig. Oxythecta n. (6 sp. 4 n.) nephelonota u. Tasmanien, hieroglypkica n. Queensland, zotioteles n. N-S-Wales, lygrosema n. Queensland; Meyrick (') p 1051-1054. Parasia albiramosella n. Achal-Tekke ; Christoph (^) p 159 Fig. Philobota athletica n. Melbourne; Rosenstook p 443 Fig. Pleurota breviella n., bistriella n., semicanella n. Corsica; Constant (^) p 259-260 Figg. — ochreostrigella n., algeriella n. Algerien; Baker (') p 269. Ptocheusa coleella n. Meeresalpen; Constant (') p 255 Fig. Sesiomorpha M. ahnormis n. Celebes; Snellen C) p 112. Setomorpha corticinella n. Celebes; Snellen ('^) p 24 Fig. JSimaethis Piepersiana n. Java; Snellen ''^j p 19. Sophronia cosmella n. Corsica; Constant ('] p 258 Fig. Stagmatophora divitella n. Golfe Juan; Constant (') p 10 Fig. Stoammerdamia griseocapitella Stt. ab. obscurior n. Syd-Varanger, Finnmarken; Sandberg (i) p 202. ßymmoca stoechadella n. Meeresalpen; Constant (^) p 260 Fig. Tachyptilia hirsutella n. Meeresalpen; Constant (') p 256 Fig. Teleia proxiinella Hb. var. peritella n. Corsica; Constant (^) p 254 Fig. Tinea Swinhoei n. Aden; Butler (2) p 502 — mauritanica n. Algerien; Baker (^) p 269 — "l fraudulens n. Melbourne; Rosenstock p 437 Fig. — Turatiella u. Genova, Italien ; Milllere (3) p 111. Tortricomorpha bilineella n., niveiciliella n. Celebes; Snellen (9) p 27, 28 Fig. Ypsolophus bisignellus n. Celebes; Snellen ('') p 30 Fig. — argentinellus n. Buenos- Ayres; Berg (2) p 282. 8. Hexapoda. XIV. Lepidoptera. C. Paläontologisches. 541 Familie Pterophoridae. Plötz (^) stellt diese Familie (Pterophorina und Alucitina) zuerst unter die Microlepidopteren, Meyrick (^) aber unter die Pyraliden. South (^) beschreibt und bildet ab alle Stadien von Mimaeseoptihis plagiodactylus Stt. mit var., Cnae- midophorus rhododactylus F. und Pterophorus monodactylus L. MGyrick f*') be- schreibt ausführlich Platyptilia emissalis Walk, Aciptilia aptalis Walk iind Doxo- steres canalis Walk. Snellon (^') erwähnt 11 sp. ausCelebes, beschreibt sie aber nicht, weil die Exemplare schlecht waren. Agdistis staticis Mill., A. Lerinsis Mill. und A. satanas Mill. sind alle gute Arten nach Heylaerts f^^). Nach Gregson (2) ist Miynaeseoptilus scahiodactylus verschieden von plagiodactylus. Platyptilia gonodactyla und seine zweite Generation (?) P. farfara werden besprochen von South (■^) und Tutt {^, ^). Platyptilia Zetterstedti South in England ist nicht die- selbe wie P. Zetterstedti Zell., sondern wahrscheinlich eine neue Art nachSouth(^). Platyptilia dichrodactylus Mühlig = P. Bertrami Rößl. South (^). Aciptilia punctinervis n. Collines de 1' Esterei ; Constant (') p 14 Fig. — lycosema n. Neu-Seeland; Meyrick (^) p 124. Cenoloba n. Typus Pterophorus obliteralis Walk.; Walsingham (^) p 176 Fig. Heptaloba n. Typus Platyptilus argyriodactylus Walk.; Walsingham (^j p 175 Fig. Lioptilus celidotus u. Neu-Seeland, Australien; Meyrick (^) p 125. Mimaeseoptihis pidcher n. Achal-Tekke ; Christoph (') p 164 Fig. — orites n., charadrias n., litJwxestus n. Neu-Seeland; Meyrick (^) p 126-127. Oedematophorus pelodactylus u. Argentinische Republik; Berg (-) p 284. Platyptilia heliastis n. Neu-Seeland ; Meyrick (*) p 129 — sematodactyla n. Argen- tinische Republik; Berg (^j p 283. C. Paläontologischeg. Scudder gibt eine Übersicht der bekannten fossilen Schmetterlinge ; sie gehören zu den seltensten Versteinerungen und sind mit wenig Ausnahmen auf das Ter- tiär beschränkt ; Weyenbergh's zwei Arten aus Solenhofen und Eichstädt sind Sphingiden ; andere mesozoische Formen wurden fälschlich als Lepidopteren beschrieben ; die tertiären Formen werden nach den größeren Gruppen bespro- chen; Prodryas Persephone Scudd. aus dem Oligocän von Florissant, Colorado, Sa- tyrites incertus Daud. Raupe von Aix (Oligocän) und fossile Mine von Nepticula fossilis Heyd. von Rott bei Bonn (Miocän) sind abgebildet. Oppenheim bespricht und verzeichnet alle bisher aus denSecundär- und älteren Tertiärperioden bekannten Arten und beschreibt als neu zwei Cossiden aus dem braunen Jura Ost-Sibiriens, wie auch 5 sp. aus den Solenhoferschichten und 1 Liparide (?) aus dem Mitteloligocän. Die Stücke aus Solenhofen bilden nebst Sphinx Schroeteri Germ, eine neue Ordo oder Subordo unter den Schmetterlingen, welcher »Rhipidorhabdi« genannt wird. Dieselben haben den Habitus der Sphin- giden, aber ein anderes Geäder und länglich gestreifte Flügelmembran und wer- den von älteren Autoren theils als Hymenopteren , theils als Hemipteren betrachtet. Die neuen sp. sind: Palaeocossus n., Jiirassicus n. und Phragmatoecites n., Damesi (Figg.) aus dem braunen Jura, Rhipidorhabdus n. Typus Schroeteri Germ., gracilis n., minimus n. und Fabellovena n., Karschi n., elegans n., com- pressa n. (Figg.) aus den Solenhoferschichten. 542 Arthropoda. XV. Allgemeine Insectenkunde. Practische Entomologie (Referent: Dr. Ferd. Karsch in Berlin.) Baudisch, Friedr., Ein Beitrag zur Schädlichkeit der Fichtenquirlschildlaus, Coccus [Leca- nium) racemostim'RsXz. in: Centralbl. Forstw. Wien 11. Jahrg. p 554 — 556. [555] *Beauvisage, G. E. Ch. , Les galles utiles. Paris 1883 80 101 pgg. [Vergl. 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D. Walsh, Le Baron, Cyrus Thomas und S. A. Forbes. 19 und 120 pgg. [Cfr. Garman.] [547, 549, 552—556, 558] , 2. Insects inj urious to the Strawberry. in : Trans. Mississippi Valley Hort. Soc. 1883 Vol. 1 p 50— S5. [552] , 3. Insects affecting the Strawberry. in: Trans. Wisconsin State Agr. Soc. Vol. 21 [552] Garman, H., A contribution to the life history of the corn plant louse [Aphis maidis Fitch). in: Forbes (') p 23—33. [553, 556] *Girard, Maurice, Leslnsectes. Traite elementaire d'Entomologie, Tome 3. et dernier. Paris, J. B. Bailliere et fils. SO p 641 — 1110 20 Taf . [Hymenopteres terebrants, Lepidopteres, Hemipteres, Dipteres et ordres satellites.] Goding, F. W., 1. Insects injurious to Vegetation in Iowa, in: Rep. Iowa State Agric. Soc. for 1882 1883 p 322—329. [547, 555] , 2. A report on insects injurious to Vegetation in Iowa, to the secretary of the State agricultural society for the year 1882. Ancona , lU. Advocate publ., co., 1883. [In- halt = (').] Haller, G., Practische Winke; in: Entomologische Notizen, in: Mitth. Schweiz. Ent. Ges. 7. Bd. p 194—197. [545] Harrach, A. , Der Käfersammler. Practische Anleitung zum Fangen, Präpariren, Aufbe- wahren und zur Aufzucht der Käfer. Herstellung von trockenen Insectenpräparaten, Anfertigung mikroskopischer Objecte, Anlage biologischer Sammlungen, Insectarien etc. Nebst ausführlichem Käferkalender. Weimar 1884 308 pgg. [550] Harrington, W. H., Injurious Insects affecting the Hickory. Coleoptera. in: Rep. Ent. Soc. Ontario for 1883 1884 p 42—52 Figg. [552] Hess, W., Die kleinen Feinde des Apfelbaumes unter den Insecten. in ; 33. Jahr. Ber. Nat. Ges. Hannover 1884 p 55 — 70, [Compilation.] Heyden, L. v., Die Phtßloxera in der Rheinprovinz i. J. 1885. in: D. Ent. Zeit. Berlin 29. Bd. p 10—11. [555] Humbert, Albin, Le grosseillier et les insectes ses ennemis. in: Bull. Ins. Agric. 10. Annee p 13—16, 27—29. [548] Joigneaux, P., Les plantes repiquees et leurs insectes nuisibles. ibid. p 45 — 47. [548] 8. Hexapoda. XV. Allgemeine Insectenkunde etc. 543 Judeich, J. F , & H. Nitsche, Lehrbuch der mitteleuropäischen Forstinsectenkunde mit einem Anhange : Die forstschädlichen Wirbelthiere. Als 8. Auflage von J. T. C. Ratzeburg's Die Waldverderber und ihre Feinde, in vollständiger Umarbeitung. 1 . Abtheil. Ratze- burg's Leben. Einleitung. Allgemeiner Theil, Mit Portrait Ratzeburg's. Wien SO 264 pgg. 3 col. Taf. und 106 Fig. [545] Karsch, Ferd., 1. Verzeichnis der im Laufe des Jahres 1884 als neu beschriebenen Arten, Varietäten, Aberrationen europäischer Insecten. in: Ent. Nachr. 11. Jahrg. p 375 — 383. [546] , 2. Über die Pflege der Bienenzucht in den preußischen Provinzen, ibid. p 265 — 268. [549] , 3. Die Erdlaus: Tychea Phaseoli, eine neue Gefahr für den Kartoffelbau. ibid. p 353 — 365, 369 — 375 ; auch separat unter gleichem Titel mit dem Zusatz : Nebst einer kurzen Übersicht der Kartofi'elfeinde aus der Classe der Insecten. Berlin, R, Fried- länder & Sohn 1886 80 20 pgg. [548, 553] Keller, C, Das Verhalten der Spinnen zu einigen Waldkrankheiten, in: Kosmos 9. Jahrg. 16. Bd. p 453—458. [546, 553, 555, 559] *Kirby, W. F., Elementary Textbook of Entomology. London 8« 240 pgg. 87 Taf.; (650 Körnicke, Fr., siehe Werner. Koritsanszky , Janos, Sur les degäts causes par les larves de Polyjihylla fullo dans les jeunes plantations de vignes ä Kecskemet. in : Rovart. Lapok 2. Bd. p 239 und 30, [546] Laugier, E., Observations sur le Dacus oleae et ses parasites. in : Bull. Ins. Agric. 10. Annee p 17—23, 33—39. [556] Lindeman, K., 1. Über den Stand der landwirthschaftlichen Entomologie in Rußland, in: Ent. Nachr. 11. Jahrg. p 189-190. [550,556,559] , 2. Die dem Getreide schädlichen Insecten in der Umgegend Moskaus im Sommer 1884. Moscou 1885. [Separatum ohne Angabe der Zeitschrift.] Tome 176 p 719 — 772. [Russisch.] [548] Lutz, K. G., Landwirthschaftlich nützliche und schädliche Insecten. Nebst einem Anhang: Anleitung zur Anfertigung von Insectensammlungen. Stuttgart , Eugen Ulmer 80 64 pgg. 4 Taf. u. 25 Figg. [545—547, 549] Mo IVIurrich, J. Playfair, Report of the Professor of Biology. in : 9. Ann. Rep. of the On- tario Agricultural College and Experimental Farm, for the year ending 31. Dec. 1883. Toronto 1884 p 169—191. [553] ^Menault, E., Les Insectes nuisibles ä l'Agriculture et h la Viticulture; 2. ed. Paris 120, 11 u. 287 pgg. 105 Fig. Moleyre, L., Insectes et Crustaces comestibles. in: Bull. Soc. Acclim. Paris (4) Tome 2 p 500—523, 562—585, 668—698. [549, 553] Nitsche, H., siehe Judeich. Nördlinger, H., Lehrbuch des Forstschutzes. Abhandlung der Beschädigungen des Waldes durch Menschen , Thiere und die Elemente unbelebter Natur , sowie die dagegen zu ergreifenden Maßregeln. Berlin 1884 222 Figg. [546] Oestlund, O. W., Insects injurious to the cabbage. in: Geol. Nat. Hist. Survey Minnesota, 13. Ann. Rep. for 1884, St. Paul, p 113—123. [548, 562] *Opel, F. M. F., Lehrbuch der forstlichen Zoologie. Neue Ausgabe. Berlin gr. 80. Ormerod , Eleanor A. , Report of observations of injurious insects and common farm pests during the year 1884, with methods of prevention and remedy; 8. Report, London, 122 pgg. Figg. [547, 549, 556, 559] Ortleb, A. & G., Der emsige Naturforscher und Sammler. 1. — ^24. Bändchen. Berlin 80 Figg. [545] 5^^ Arthropoda. Osborn^ Herbert, 1. 1\ie coxn-root^oxm [Diahroticalongicornis). in: Bull. Iowa Agrie. Coli. Dep. Ent. 1884 No. 2 p 61—69. [552] j 2. External parasites of domestic animals. ibid. p 69 — 79. 1 549] ^ 3. Insecticides and their application. ibid. p 87 — 97. [549] Packard, A. S., 1. Insects injurious to forest and shade trees. in: Bull. No. 7 U. S. Ent. Commiss. Dep. Interior, Washington 1881 275 pgg. 100 Figg. [546, 549—554, 556—559] , 2. Second report on the causes of the destruction of the evergreen and other forest trees in northern New England and New York, in: Riley (2) p 90—99. [546, 552, 554] Peragallo, A., Etudes sur les Insectes nuisibles ä l'agriculture. Pt. 2; Le Chene, la Vigne, rOranger, le Citronnier, le Caroubier, le Cerisier, le Figuier, le Chätaignier, le Pom- mier et le Poirier. Nice 183 pgg. 1 col. Taf. [546, 547, 554—556, 559] Rant, Math., Beschreibung der gewöhnlichsten der Obstzucht schädlichen Inseeten. (Lai- bach. Landw. Ges.) Wien, W. Frick i. Comm. 1884 80 59 pgg. 17 Figg. [Com- pilation.] *Ratzeburg , Jul. Theod. Christ., Die Forst-Insecten oder Abbildung und Beschreibung der in den Wäldern Preußens und der Nachbarstaaten als schädlich und nützlich bekannt gewordenen Inseeten ; 2. mit Zusätzen und Berichtigungen vermehrte Auflage. Wien, Ed. Hölzel 40 in 30 Lief. Riley, Charles V., *1. Report of the Entomologist. in: Rep. Comm. Agric. 1883 p 99 — 180. [553] , 2. Report of the Entomologist for the year 1884. 80 7, 134 u. 9 pgg. 10 Taf. in : Ann. Rep. Departm. Agric. Washington p 285—418. [Cfr. Bruner, Packard 2 , Smith, Web- ster.] [548, 550, 554—556, 559] , 3. Notes on Joint Worms, in: Rural New- Yorker Vol. 44 p 418 Figg. [554] Roth , H. Ling, The animal parasites of the sugar cane. Aus : »Sugar cane«. March, April. London, Trübner & Co. 80 16 pgg. [548] Saunders, W. E., Insects injurious to drugs. in: Canad. Entomol. Vol. 15 1883 p 81 — 83; und in: Rep. Ent. Soc. Ontario for 1883 1884 p 29—30. [549] Schwarz, E. A., 1. Insects affecting drugs. in: Canad. Entomol. Vol. 15 1883 p 140; und in: Rep. Ent. Soc. Ontario for 1883 1884 p 30. [549] * , 2. Coleoptera infesting Prickly Ash. in: Amer. Natural. Vol. 17 1883 p 1288— 1289. Smith, J. 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Textfig. in 4». 648—550, 552, 654—556, 569] Whitehead, M., Reports on insects injurious to hop plants, corn crops and fruit crops in 8. Hexapoda. XV. Allgemeine Insectenkunde etc. 545 Great Britain. — No. 1. Insects injurious to hop plants. [Nach: Las ennemis du Houblon. in: Bull. Soc. R. Linn. Bruxelles Tome 13 1886 p 72—83.] [548] Wingelmüller , Karl, 1. Das Anlegen von Käfer- und Schmetterlingssammlungen. Magde- burg 112 pgg. 32Figg. [545] , 2. Der Käfer- und Schmetterlingssammler. Anleitung zur Herstellung und Hand- habung der beim Fange, der Zucht und dem Präpariren von Käfern, Schmetterlingen und Raupen als geeignet bewährten Geräthe , sowie zui Anlage und Erhaltung von Insectensammlungen. Magdeburg 8° 32 Figg. [545] Anonym, 1. Utilite des Insectes. in: Bull. Ins. Agric. 10. Annee p 113 — 117. [549] , 2. Insect pests on the Pacific Coast. in: Amer, Natural. Vol. 19 p 716. [550, 556 • , 3. Notes ou the principal injurious insects of the year. in: Entomol. Amer. Vol. 1 p 176—178. [549, 552, 555, 559] A. Literarische Hülfsmittel. Karsch {^) gibt ein Verzeichnis der 18S4 neu beschriebenen Arten des europäi- schen Faunengebietes : Lepidoptera IS, Diptera72, Hemiptera Sl.^Conf. *Girard, Kirby; s. ferner oben p 225, 345, 411. B. Entomologische Technik (Sammeln, Conserviren etc.) Als Anhang liefert Lutz (p 47-52) eine «Anleitung zum Fangen, Präpariren und Aufbewahren der Insecten« aller Abtheilungen ; Ortleb behandelt die Auf- bewahrung der Käfer, Schmetterlinge und Raupen, der Spinnen und Tausend- füße ; Wingelmüller '/, ^] betont die Nothwendigkeit, nicht nur auf Reichhaltig- keit und richtige systematische Anordnung der Sammlungsexemplare zu sehen, sondern auch, besonders bei den verschiedenen Entwickelungs- , bez. Verwand- lungsstufen der Schmetterlinge und Käfer, auf eine natürliche Stellung jedes einzelnen Thieres und auf eine wohlgefällige Anordnung der ganzen Sammlung bedacht zu sein, da der gute Eindruck den Werth einer Sammlung bedeutend erhöht. Er gibt eine eingehende Beschreibung der zum Fange und der Auf- arbeitung der Insecten als am geeignetsten befundenen Hülfsmittel; eine kurze Darstellung der Lebensweise und der ergiebigsten Fundorte von Schmetterlingen und Käfern geht voraus. Haller empfiehlt Desinfection der Insectensammlungen durch Schwefelkohlenstoff gegen Tyroglyphen (IVIilben) ; Gamasiden (Käfer- milben) könnten dagegen in Sammlungen nützlich sein ; Papiereinlage in In- sectenkästen ist nur an den Rändern zu fixiren tmd zwar mit Gummi arabicum, nicht thierischem Leim oder Kleister; ölig gewordene Käfer werden in reinem ÄthcJ entfettet , mit der Nadel auf dem Korkstopfen einer weithalsigen Flasche kopfüber 24 Stunden in Äther gestellt ; reines Brunnenwasser, von einer Tempe- ratur , die noch eben vom Finger ertragen wird , macht staubige Käfer flexibel ; zum Waschen dient Seifenwasser von weißer Seife und eine weiche Zahnbürste. Vergl. Harrach u. ferner oben p 171, 184, 225, 375. C. Schaden, Nutzen, Vertilgungsmittel, Pflege. 1. Allgemeines. Forstinsecten künde. Judelch & Nitsche characterisiren die Glieder- füßler im Allgemeinen und ihre Bedeutung für Forstwirthschaft und behandeln ausführlich ihre Morphologie, Anatomie, Fortpflanzung und Jugendzustände. Zool. Jahresliericlit 1885. II. 35 546 Arthropoda. Die Verhältnisse der Generationen werden graphisch dargestellt unter Anwen- dung neu eingeführter Zeichen. Eine sehr eingehende Besprechung erfahren die Insecten als natürliche und wirthschaftliche Macht ; zum Schluß wird Entstehung und Abwehr größerer Insectenschäden und die systematische und practische Entomologie behandelt. Nördlinger bespricht besonders eingehend Rhynchites, Apoderus, Ajmte, Lyctus, Astynoynus aedilis , Clytus^Pmitia crataegi, Zeuzera aesculi, Tortrix pomonana, Cimbex u. a. und bringt als Beigabe eine «Entomologia poetica«. Vergl. ferner *Ratzeburg. Packard (•) liefert ein Verzeichnis der Bewohner, namentlich der Schädlinge, von Quercus 224 sp., Ulmus 46, Carya alba und to- mentosa 97, Juglans nigra 11, cinerea 20, Castanea vesca 20, Robinia pseuda- cacia 22, Acer saccharinum und rubrum 38, Populus monilifera u. a. 46, Tilia 23, Betula lenta, populifolia etc. 20, Fagus ferruginea 15, Liriodeudron tulipi- fera 9, Magnolia umbrella 1, Asimina triloba 2, Zanthoxylum americanum 3, Ailanthus glandulosa 2, Aesculus glabra 6, Negundo aceroides 4, Prosopis 4, Gleditschia triacanthus 8, Prunus serotina 22, virginiana 4, americana 6, Amelanchier canadensis 4, Pyrus americana 4, Crataegus 19, Liquidambar styraciflua 4 — 5, Nyssa multiflora 1, Diospyrus virginiana 4, Laurus 2, Fraxi- nus 19, Sassafras officinale 6, Platanus occidentalis 10, Corylus americana 8, Ostrya virginica 12, Carpinus americana 2, Alnus serrulata 18, Salix 99, Pinus strobus, rigida, taeda etc. 105, Abies nigra und alba 24, balsamea 19, canaden- sis 10, menziesii 5, bracteata 1, Juniperus virginianus 5, communis 9, Larix americana 10, Thuja occidentalis 3, Sequoia gigantea und sempervirens 3, Taxodium distichum 1 ; die Mehrzahl der Arten sind nebst ihren Ständen kurz beschrieben und, oft mit ihren characteristischen Fraßgängen, abgebildet; das Ganze ist eine Fortsetzung von Kaltenbach's »Pflanzenfeinde aus der Classe der Insecten«. Nach Peragallo ist der Hauptfeind der Eiche Coroebm bifasciatus Cast.-Gory (Col.) neben zahlreichen schädlichen Cocciden und anderen Hemipte- ren, Hymenopteren, Lepidopteren und Gallen ; ihre Hauptfreunde sind Calosoma sycophanta, Silpha maculata und Picus viridis. A. K. Dimmock liefert ein Ver- zeichnis der Feinde der Birke; gegenüber Kaltenbach (1874) mit 270 euro- päischen und Packard (1881) mit 19 americanischen Insecten von Betula führt sie 115 Arten auf, von denen 34 ausschließlich auf der Birke vorkommen: Orthoptera 2, Hemiptera 11, Diptera 2, Lepidoptera 66, Coleoptera 31, Hyme- noptera 3. Nach Packard (^j haben Abies-, Pinus- und Populusarten im nördli- chen Maine, New- York und Casco-Bay durch Insectenschäden empfindlich ge- litten (s. Coleoptera, Lepidoptera, Hymenoptera) . Vgl. ferner *Opel, Forbes ('). — Nach Keller greift in die Öconomie des Waldes das Heer der Spinnen höchst wirksam ein ; bei den allergewöhnlichsten Waldkrankheiten, deren Ur- sachen Insecten sind , dämmen sie den Infectionsheerd ein oder beseitigen ihn völlig ; ihre Bedeutung beschränkt sich aber auf Erkrankungen der Oberfläche, von Blattwerk, Rinde, Benadelung. Sie sind jedoch trotzdem einflußreicher als die auf dem gleichen Waldgebiete lebenden insectenfressenden Vögel (Specielles s. bei Hemiptera, Coleoptera und Lepidoptera). Weinbau: Nach Peragallo sind dem Weinstock schädlich von Lepidopteren besonders Conchylis püleriana Seh., roserana Tr. und Ino ampelophaga Bayle (Figg.j, von Coleopteren besonders ^romms vitisYhx. (Figg.), Vesperus Xatarti Muls. , Graptodera ampelophaga Guer. , von Hemipteren Fhylloxera vastatrix Planch. (gefl. ^ und aptere Nymphe Figg.); Freunde des Weinstocks sind Procrustes coriaceus, Carabus auratus, lotharingus, vagatis, Staphyhnus, Silpha, Luciola, Drilus und Oribatiden. Über Schädigungen des Weinstocks in Ungarn durch Polyphylla fullo (ungarisch) cf. Koritsänszky. Vgl. auch *IVIenault, Lutz, Forbes (\i. 8. Hexapoda. XV. Allgemeine Insectenkunde etc. 547 Landwirthschaft. Lutz behandelt nützliche und die dem Getreide, den Feld- und Gartengewächsen, den Obstbäumen und dem Weinstock schädlichen Insecten; ergibt einen Kalender und eine systematische, von col. Figg. begleitete Zusammenstellung derselben. Ormerod plaidirt für Unterdrückung der Sper- linge, die nicht unsere Freunde seien, und behandelt mit Figuren die 1884 in England schädlich aufgetretenen Insecten; neu ist das Auftreten eines durch Insecten oder Pilze hervorgerufenen Brandes der Petersilie; als Feinde des Apfel- baums werden Cheimatobia hrumata, der Bohne Sitona lineata, crinita, puncticollis^ des Kohles Pieris brassicae, der Möhre Aphis papaveris ?, A. carotae (Parasit Hemiteles melanarius Fig.), des Getreides und Grases Charaeas graminis (vergl. Lepidoptera), Tipula oleracea, Thrips cerealium, Cecidomyia tritici (vergl. Diptera), Agriotes lineatus, obscurus, sputator, der Stachelbeere Nematus ribesii^ des Hopfens Phorodon humuli var. mahaleb^ Dilophus vulgaris^ der Zuckerrübe Silpha opaca, Melolontha vulgaris, Anthomyia betae, der Eiche Pygaera bucephala, der Zwiebel Anthomyia ceparum, der Kiefer Lophyrus pini, der Kartoffel Acherontia atmpos, lulusarten, Polydesmus complanatus , von Rubus (raspberry) Lasioptera rubi, der Rübe Plutella cruciferarum^ Phyllotreta nemorum, Agrotis segetmn, exclamationis, Tryphaena pronuba^ Plusia gamma, der Weide PAratora Vitellinae hehaiViü&M; der Schaden durch Insectenschäden am Hopfen habe 1882 gegen 1 Million Pf. Ster- ling, der an der Rübe durch die Turnipfliege habe 1881 über eine halbe Million betragen. Nach Goding (^ 2) traten 1882 in Jowa die Vegetation schädigend auf: Anisopteryx vernata, CHsiocampa americana, Seiandria rubi, Phyllophaga fiisca, Leucania unipuncta, Blissus leucopterus, Doryphora decemlineata, Pionea rimosalis, Pieris rapae. Forbes (^) behandelt die Schädlinge des Feldes (Getreide, Weizen, Sorghum, Klee) und des Gartens (Erdbeere, Weintraube, Brombeere und Himbeere, Kohl, Apfel und Birne, Acer dasycarpum und Ulmus); vergl. die einzelnen Ordnungen ; Miscellen betreffen die Hymenoptera, Lepidoptera, Cole- optera ; ein entomologischer Kalender soll die Oscillationen der wichtigsten Arten geschichtlich verfolgen ; es prävalirten darnach 1884 in Illinois Puhinaria innumerabilis und Laphygma frugiperda ; Cecidomyia destriictor, durch Parasiten und die Sommerdürre sehr decimirt, trat nur in Clark County und Eastern Illinois zerstörend auf, auch Blissus nur vereinzelt ; dieser hat gewöhnlich 2 Brüten, 3 nur dann, wenn er nicht allzu massenhaft erscheint; selten war auch die viel- fach mit Laphygma frugiperda verwechselte Leucania unipuncta ; häufiger trat Diabrotica longicornis auf; in Central- und Ost-Illinois erschien Isosoma tritici und grande ; im äußersten Nord-Illinois wurde im Juli das gefährlichste Weizen- insect, Cecidomyia tritici, die Weizenmücke, entdeckt. Eine literarisch sehr wich- tige Beigabe bildet der Generalindex zu den ersten 12 Reports der Staatsento- mologen von Illinois. Vergl. *Harrington. Die Schädlinge der Obstbäume behandeln, ohne Neues zu bringen, Rant und Hess, die der Olive Laugier (cfr. Diptera und Lepidoptera); Peragallo be- spricht als Feinde der Orange (Citrus aurantium) und Citrone (Citrus medica, limetta und Limetta bergamotta) Dactylopius citri Boisd., Aspidiotus limonii Sign., Lecanium hesperidum Lec, o?me Bern., Acrolejna citri MiW., Ephestia gnidiella Mill., Eupithecia pumilataWon., als ihre Freunde : Syrphus hyalinatus Fall. (Figg.j , Hemerobius chrysops L., als Feinde der Ceratonia Guerinia serratulae Fbr. und Aspidiotus Ceratoniae Sign., der Kirsche Urophora cerasorum Macq. [Musca cerasi L.) Figg., als Feinde der Feige: Simaethis nemorana Hbn. (sehr gefährlich), Erastria scitula Ramb., Ceroplastes rusci L., My tilaspis ßcus 8ign., Dactylopius ficus Sign., Morimus funestus Fb., Parmena fasciata Villers, Pogonocherus Perroudi Mulsant, als Feinde der Kastanie Carpocapsa splendana Hbn., von Apfel und Birne Hyponomeuta maUnella Z., Carpocapsa pomoiiella L., Tingis pyri Geoff., 35* 548 Arthropoda. Aphis niali und Myzoxylus mali Blot [Schizoneura lanigera Hausm.) . Einen neuen Feind der Birne lehrt Smith kennen (vergl. Diptera). Als Feinde des Kohls be- handelt Oostlund Pieris rapae Sehr., Plusia brassicae Riley, Plutella cruciferarum Zell., Ceramica picta Harr., Mamestra chenopodii Alb., Murgantia histrionica Hahn, Aphis hrassicae, Haltica pubescens 111. und Crioceris striolaia Fhr. mit An- gabe ihrer Vertilgungsmittel ; Riley ('^) bebandelt als Feinde des Kohls Agrotis messoria Harr. Figg., annexa Treitschke Figg., maleßda Guen. Figg., clandesiina Harr. Figg., ypsilon Rott, saucia Treitschke Figg. und Hadetia devastatrix Bruce Figg., Epicaerus imbricahis Say Figg., Phyllotreta vittata F. Figg., Zimmermanni Crotch Figg., albionica Lee. Figg. und Doryphora decemlineata Say, Murgantia histrionica Hahn Figg., Lygus lineolaris Beauv. Figg., Nysius angustatus Uhler [raphanus How.) Figg. und Aphis brassicae L. Figg., Anthomyia brassicae Bebe. Figg. und Oscinis brassicae n. sp. (p 322), Caloptenus spretus Uhler; weitere Einzel- heiten betreffen Kerosen-Emulsionen, Seidencultur und Mittheilungen über Auftreten einzelner Hymenopteren, Coleopteren, Dipteren, Lepidopteren und Hemipteren (cfr. diese Ordnungen). Als Schädiger des Hopfens behandelt Smith Aphiden, Whitehead Aphis humuU Fig., Dilophus vulgaris Fig., Elater lineatus Fig., Eua- canthus intemiptus Fig., Haltica concinna Fig., Hepialus humuli Fig., Lygaeus unibellatarum, PsylUodes attenuatus, Agromyza frontalis , Tetranychus telarius Figg. lulus londinensis und guttatus Figg., terrestris, Polydesmus complanatus . Als Ribesfeinde führt Humbort auf Ne7natus ribis, Aphis ribis, Chelonia purpurea und Sesia tipuliformis , nebenher sind Hemipterenarten und Abraxas grossulariae ge- nannt; der Nematus war im Sommer 1884 im ganzen Osten Frankreichs äußerst gemein, als Mittel gegen ihn bewährte sich nur Abnahme der Afterraupen oder der Eier. Feinde der Preisseibeere nach Smith Acrobasis vaccinii Riley, Anchylopera vacciniana Pack. , Teras occycoccana Pack. Karsch (•') gibt eine kurze Geschichte der Ansichten über die Ursache der 1845*^'' Kartoffelkrank- heit; als wirkliche Feinde der gesunden Kartoffel sind bis jetzt in Deutschland nur Leptinotarsa decemlineata Say und Acherontia Atropos oberirdisch, Melolontha- und Elater-[Agriotes-) Avten, sowie Agrotis pronuba u. a. unterirdisch aufgeti'eteu, zu denen seit 1885 ein neuer, Tychea phaseoli Fass,., sich hinzugesellte. Vergl. ferner Riley f^) Trichobaris. Die Feinde des Getreides behandelt compilatorisch Werner; neu ist die Annahme p 401, daß der sog. »Senger« des Hafers der Thätigkeit eines in den Blattscheiden und -spitzen des Hafers hausenden Phy- toptus seine Entstehung verdanke; die Krankheit und die Milben kamen im öcon.- botan. Garten zu Poppeisdorf und in Lobberich zur Beobachtung; es werden aufgeführt: Coleoptera 32, Hymenoptera 2, Orthop tera 16, Thysanoptera 2, Lepidoptera 34, Diptera 13, Hemiptera 14; [Pachytylus migratorius L. ist irr- thümlich unten die Locustodea gerathen und die Angabe p 404, 6'ilvanus surina- mensis L. sei j)auf dem europäischen Continent noch unbekannt«, trifft nicht zu]. Webster behandelt besonders die Schädiger des Weizens (Hymenoptera, Diptera, Hemiptera, Orthoptera) und Hafers (Lepidoptera), Roth die des Zuckerrohres, Lindeman (2) die 1884 um Moskau aufgetretenen Schädlinge, der russische Text enthält die Lateinnamen : Chlorops, Tinea taurella, Plectroscelis aridella, Eurytoma hordei, Hydrellia griseola. Vergl. ferner *JVIenault. Joigneaux widerspricht der Behauptung vieler Naturforscher, daß z. B. Ela- teren nur in Verwesung befindliche Pflanzen angreifen ; wohl werden sie von der Fäulnis der Wurzeln angezogen , aber sie suchen diese Fäulnis nicht, sondern die lebenden Theile erkrankter Pflanzen. Eine milde Temperatur und eine reg- nerische Jahreszeit sind die besten Bedingungen beschleunigter Erholung ver- pflanzter Gewächse. 8. Hexapoda. XV. Allgemeine Insectenkunde etc. 549 Den Spezereiwaaren schadende Insecten sind nach Saunders Coleoptera 6, nach Schwarz (^) noch 2 fernere. Als änßere Parasiten der Hausthiere bespricht Osborn {^) Pediculiden, Mallophagen, Sarcoptiden und Ixodiden. Ormerod liefert Nachträge zu den frü- heren Bemerkungen über die der Lederindustrie durch Hypoderma bovis erwach- senden Schäden und deren Abhülfe. Über Insecticide handeln, ohne wesentlich Neues zu bringen, Riley [^j Osborn (3). Über direct nützliche Insecten handelt Anonym ('). Sie reinigen die Luft durch Entfernung verschiedener Unrathstoffe, liefern Producte zur Nahrung oder für Pharmacie und Lidustrie ; indirect nützlich: Cicindelen, Caraben, Necro- phoren, Lampyren, Coccinellen, Libellen, Ichneumonen; direct nützlich : Biene, Ci/nips, Canthariden, Seidenraupe. Über die nützlichen Gallen schreibt ""Beauvi- Sage, über die Seide in Assam Stack. Nach Karsch (2) befanden sich im Jahre 1873 in den preußischen Provinzen 1453 404 Bienenstöcke; Hannover hatte die größte Zahl, Schlesien die meisten Stöcke mit Mobilbau, Schleswig-Holstein wies die größte Intensitätszahl auf, Hannover die größte Extensitätszahl. Nach Bessler ist von 1873 bis 1883 die Bienenzucht in Preußen zurückgegangen auf 1 237 991 Stöcke, hat aber eine Zunahme an Mobilbauten erfahren, deren Antheil 1883 19,3% gegen 1873 mit nur 12,6% beträgt; Verf. behandelt die Geschichte der Bienenzucht sehr eingehend statistisch und in ihrem ganzen Umfange. Als eßbare Insecten bildet Moleyre ab: Pachyhßus migratorius, Acridium peregrinum^ Agrotis spina, Calandra palma)-um, Ergates faber^ Myrmecocystus meiliger. (2. Aptera.) 3. Pseudoneuroptera. Lutz behandelt die Libelluliden als indirect nützliche Insecten , vergl. Anonym (1). Termes frontalis Haldem. als Feind der Castanea vesca : Packard [^). 4. Nenroptera. Lutz behandelt als indirect nützlich Chrysopa vulgaris Sehn. Figg. in allen Ständen; desgl. Ormerod Chrysopa sp. als Vertilger von Aphis mdidis Ftch., Riley ['^.Chrysopa als Feind der Heliothis. Cfr. Garman. Vergl. ferner den Ab- schnitt »Oconomisches« auf p 172. (5. Strepsiptera.) 6. Orthoptera. Werner behandelt als Getreideschädiger Gryllotalpa vxdgaris L. , Decticus verrucivorus L., Pachyfylus migratorius L., Oedipoda atrox Sc, Caloptenus spretus Thom., femicr-rtibrum Harr., Stenobothrtis variabilis Fieb., Caloptenus italicus L., Acridium tartaricum L. und americanum Dr. Nach Packard (^) schadet der Ulme Oecanthus nirms Serv. Figg., den Caryaarten Diapheromera femorata Say Figg. (auch der Eier). Nach A. K. Dimmock leben auf Betula alba Phaneroptera curvi- cauda De Geer und Caloptenus femur-rubrum De Geer; Feinde des Getreides in Illinois nach Forbes (') Pezotettix femur-rubrum, atlanis, Acridium a^nericanum, Caloptenus differe^itialis, Orchelinum vulgare; Caloptenus spretus und Oecanthus niveus schädlich dem Grase niedriger feuchter Wiesen an verschiedenen Punkten von Elkhorn Valley und den Thälern von Loups. Ein Weizenschädiger ist nach Webster Gryllus abbreviatus Serv. Hauptschädiger 1884 in Nord- America nach Anonymus ( ') Melanop)lus devastator und spretus, sowie Cammda peJhtcida. Nach 550 Arthropoda. Anonymus ('-) litt Californien 1884 sehr an Insectenplagen ; Acridier ver- nichteten die ))crops« in Placer, Yuba, Nevada, Amador, Napa, Sonoma, San Joaquin, Butte, Sacramento, El Dorado, Tehama und Mercer Counties, sowie die Weizenfelder in Alamada, Napa, Sonoma und Solano Counties [cfr. Diptera]. Nach Lindeman (') ist entgegen Köppen's Ansicht Acridium miffratorium ein Sumpfthier, das nur hin und wieder die trockene Steppe angreift ; Eiern, in nie- drigen, sumpfigen Gegenden abgelegt, schadet zweimonatliches Unterwasserstehen nicht, nur wird ihre Entwickelung verlangsamt ; Eier, in der trockenen Steppe abgelegt, sterben meist ab. Mantis Carolina Feind der Heliothis nach Riley (-). Cfr. ferner Moleyre, Riley (^j und den Abschnitt »Massenhaftes Auftreten etc.« auf p 194. 7. Thysanoptera. Werner behandelt als Getreidefeinde Thnps cerealium Hai. und frumentarium Bei. Cfr. Ormerod. 8. Coleoptera. Harrach beschreibt die Fang- und Sammelgeräthschaften, Fang- und Tödtungs- gläser, Tödtungsmittel, Fang von Myrmecophilen und Aufsuchen der Käfer bei anderen Hymenopteren, Fang von Coprophagen, Fang an Aas und vegetabili- schen Überresten, Fang von Pilzkäferu, Fang unter Laub und Moos, unter Steinen, Fang von Uferkäfern, Fang mit dem Kescher, Beklopfen der Sträucher und Stauden, Schütteln der Bäume, Absuchen der Baumstämme, Losbrechen und Auffangen von Baumrinden , verschiedene Sammelmethoden , Käferfang im Wasser, Abend- und Nachtfang von Käfern, deren Präparation, Aufzucht, Fund- plätze der Larven , Präparation der Larven und Nymphen , Sammlungen von Insectenpräparaten, Anfertigung mikroskopischer Präparate, das Insectarium, mehrtägige Sammelausflüge und Reisen, Versandt, Bestimmen, Litteratur, Ein- ordnen in die Sammlung, Sammlungskästen und -schränke, biologische Sammlun- gen, deren Erhaltung und Pflege, entomologischen Tauschverkehr, Ankauf und das entomologische Tagebuch; fast die Hälfte des Buches bildet ein 133 Seiten starker Käferkalender. Nach Packard (') schaden der Eiche Chrysobothris dentipes Germ. (Larve Figg.), femorata Fbr. (alle Stände und die Fraßgänge Figg.), Buprestis chlorocephala, Eupsalis minuta Drury (alle Stände Figg.), Pandeletius hilaris Hrbst., Graphi- surus fasciatus De Geer (Larve beschrieben) , Leiopus querci Ftch. , Arhopalus fulminans Fbr., Phymatodes variabilis Fbr. (Larve und Imago Figg.), varius Fbr., Clytus Colonus (Larve und Puppe beschrieben), Smodicum cucnjiforme Say, Mal- lodon dasyptomus Say, melanopus L., Magdalis olyra Hrbst. (alle Stände und die Fraßgänge Figg.), Lymexylon sericeum Harr., Hylecoetus americanus Harr., Goes debilis Lee, Orthosoma brunneum, Elaphidion villosum F. (alle Stände und die Gänge Figg.), Attelabus bipustulatus Fbr. (Larve und Puppe beschrieben). Brachys aerosa Mesh. [Br. aeruginosa Figg.), Balaninus rectus Say (Fig.) nebst 15 anderen Arten; der Ulme Saperda tridentata Oliv. (Larve und Imago Figg.), lateralis Fbr., Dryobius sex-fasciatus Say, Tomicus [Phloiotribus) liminaris Harr., Hylesinus opaculus Lee. (Fig.), Dularius brevilineus Say (Fig.), Neoclytus erythro- cephalus Fbr., Galeruca calmariensis L., C/irysomela scalaris Lee, Monocesta coryli Say nebst 4 nominatim aufgeführten ; den Caryaarten (alba und tomentosa) Goes ticjrinus Deg., pulcher Haldem., Chion cinctus Drury (Fig.), Saperda dis- coidea Fbr., Cyllene picta Drury (alle Stände Figg.), Oncideres cingulatus Say (Imago und deren Schädigungen an Carya alba Figg.), Dysphaga tenuipes Hal- dem., Dicer ca lurida Fhr., Sterospherus notatus OVw. , Neoclytus erythrocephalus Fbr., Dorcaschema nigrum Say, Scolytiis quadrispinosus Say (an Carya olivae- 8. Hexapoda. XV. Allgemeine Insectenkunde etc, 551 formis, alle Stände und die Gänge Figg.), Sinoxylon basilare Say, Apate basilaris Say, Conotrachelus elegans Say, Balaninus nasicus Say, nebst 19 sp. Col. nach Le- conte ; es wird auch eine Nitidulidenlarve abgebildet , welche den Caryafeinden nachstellt; Juglans nigra schädlich Attelabus analis Weber, Juglans cinerea Leptostylus macula Say; Castanea vesca schädlich Arhopalus fulminans Fbr., Calloides nobilis Say, Silvanus bidentatus Fbr., Balaninus caryatrypes Boh. (Larve Figg.] , außerdem Gänge eines unbekannten Erzeugers ; Kobinia pseudacacia schädlich Cyllene picta Dr., Odontota scutellaris Ol., Hispa suturalis Harr., Apion rostrum Say (Fig.) ; schädlich auf Acer saccharinum und rubrum : Glycobius spe- c«osMS Say (Fig.), Chrysobothris femorata Fbr., Dicerca divaricata Say, Graphi- surus fasciatus Deg., ILyloterus poliius Baj, Stenoscelis brevis Bohem., Xestobium affine; schädlich auf Populus monilifera Saperda calcaraia Say, Hyperplatus aspersus Say, Oberea Schaumii Lee, mandarina Fbr., Dorytomus mucidus Say, Eros coccinatus Say, Plagiodera scripta Fbr. (alle Stände, Varietäten der Imago und Eier Figg.); schädlich auf Populus Saperda calcarata Say (Larve Fig.), moesta IjQQ,., concolor hec. , Priotms laticollis Dvnvy [alle 8täudie F\gg.), Xyleiäes poptdi Wlk.; schädlich auf Tilia Saperda vesiita Say (Larve und Imago Figg,), Chrysomela Scolaris Lee. (Ei und alle Stände beschrieben) und 3 andere Arten; schädlich auf Betula (lenta, populifolia etc.) Syneta tripla Say und 5 andere, auf Fagus ferruginea Brachys aeruginosa Gory (Larve Fig.) und 9 andere, auf Liri- odendron 1, Zanthoxylum 2 [Liopus xanthoxyli Shim. Fig.), Negundo 1, Prosopis 4, Gleditschia 1, Prunus 3, Amelanchier 2, Pyrus 2, Crataegus 4, Laurus 2, Fraxinus 5, Platanus 1, Corylus 2, Alnus 6, Salix 12; schädlich auf Pinus stro- bus, rigida etc. Chalcophora virginiensis Drury, liberta Germ., angulicollis Lee, Chrysobothris dentipes Germ., Harrisii Hntz, trinervia Krby. (Fig.), Buprestis striata Fhv., ultramarina 8siy, lineata Fhw, rus ticoi^um Kvhy . (Fig.), 3Ielanophila fulvo-guttata Harr., Drummondi Krhy. (Fig.), Dicerca punctulala Schuh., tuber- culata Lap. , prolongata Lee. (Fig.), tenebrosa Krby., Monohammus confusor Krby. (Larve, Puppe und Fraß Figg.), marmoratus Randall, scutellatus Say, Eupogonius pinivora Ftch., Leptoptylus commixtus Haldem,, Asemum moestum Haldem. (alle Stände Figg.), Criocephalus agrestis Krby., productus L. (Fig.), Aedilis nodosus Fbr. , obsoletus Oliv. , Euderces pini Oliv. , Callidium antennatum Newm., Hylotrupes bajulus Linn,, Orthosoma brunneum Deg. (Fig.) , Frionus emar- ginatus Say (Fig.), Ergates spiculatus Lee. (auf Pinus ponderosa in Colorado), Tragosoma Harrisii Liec, Rhagiuni lineatum Ol., Xyleborus xylographus BslJ , To~ micus calligraphus Germ. (Gänge Fig., Muttergang gerade, Larveugänge einseitig ausstrahlend), cacographus Lee, pini Say (Puppe und Imago Figg.), Pityojjh- thorus puberulus Lec. (Fraßgänge Fig.), materiarius Ftch., Xyleborus impressus Eichh., coelatus Zimmerm., Xyloterus bivittatus Mannh., Bryocoetes septentrionis Mann., Xylurgus terebrans Oliv., Dendroctonus rufipennis Krby. (Imago Fig.), Xylurgops pinifex Ftch., Xylastes porculus Fv. [carbona^'ius Ftch.), Xylobius pales Hrbst., Carphoborus bifurcus Eichh. (Fraßgänge Fig.), bicristatus Chap., Hypo- molyx pinicola Lec, Hilipus squamosus Lee, Crypturgus atomus Lee, Ernobius tenuicornis Lee, Pachylobius picivorus Germ., Pissodes strobi Peck. (alle Stände Figg.), Chrysomela philadelphicalj., Glyptoscelis hirtus Oliv., Dichelonycha albi- collis Burm., Anomala pinicola Melsh.; außerdem Tomicus exesus Harr, auf Pinus picea; schädlich auf Abies nigra und alba Monohammus confusor Krby., Dicerca oder Melanophila sp., Melanophila longipes, Pissodes strobi Peck., Rhagium linea- tum Oliv.; Xyloterus bivittatus Krby., Xyleborus coelatus Zimmerm., Crypturgus atomus Lee, Pityophthorus materiarius Ftch., Xylurgops pinifex Ftch., Cupes con- color Nestw., Pinipestis Zimmermanni Grote ; schädlich auf Abies balsamea Mono- hammus confusor Krby., Xyloterus bivittatus Krby., Xyleborus coelatus Zimmerm. 552 Arthropoda. Crypturgus atmnus Lee, Pissodes strobi Pack., Rhagium lineatum Oliv., auf Abies canadensis Leptura canadensis F., Pissodes strobi Peck., Cryjiturgus atonius Lec, Hadrobregmus foveatus Krby., Orthosoma brunneum Fbr. nebst einer Buprestiden- larve (? Dicerca) und zwei Cerambycidenlarven ; auf Abies menziesii Dryocoetes äff aber Mannh. (alle Stände Figg.), Tomictis pini Say, Dendroctonus 7-ußpennis Krby., terebrans Oliv., Anthophilax mirificus Bland.; schädlich auf Juniperus vir- ginianus Phloeosinus dentatus Say (Sterngänge Figg.) , Callidium antennatum Newm., Hylotrupes Ugneus Fbr., auf Juniperus communis Metachroma sexnotata Say, Lei- opus facetus Say (Larve und Imago Figg.), auf Larix americana Totnicus pini Harr., auf Sequoia gigantea eine Cerambycideularve , auf Tilia americana Pogonocherus nubilus Lec. A. K. Dimmock verzeichnet von Betula Chlamys plicata Fbr., Telephorus bilineatus Say, Elater nigricollis Hrbst., Tps sanguino- lentus Oliv., als ausschließlich die Birke bewohnend: Gonioctena pallida L. (auf B. alba), Syneta tripla Say, Tylonotus bimaculatus Had., Gracilaria niinuta Fbr. (auf B. lenta) , Bellamira scalaris Say, ? Xylotrechus colon'ts Pack., Aphrastus iaeniatus Gyll. (auf B. alba), Dendroides concolor Newm. und canadensis Latr. (auf B. papyracea) , Meracantha contractu Beauv. (auf B. lutea), Bolitotherus bifurcus Fbr. 'in Polyporus betulinus), Hoplocephala bicomis Fbr., Diaperis hydni Fbr. (in Polyporus betulinus), Centronojms calcaratus Fbr., Nycto- bates pensylvanica Degeer, Phellopsis obcordata Krby. (in Polyporus betulinu.s , Campidus denticor^üs Krby. (auf B. papyracea), Melanotus ? parumpunctatus Melsh. (auf B. alba , Melanotus 'f communis GyW. desgl. , Elater protervus Lec. (desgl.), Chrysobothris sexsignata Say, Ceruchus piceus Weber (auf B. alba, conf. Diptera), Macrodactylus subspinosus Fbr. (auf B. alba), Dichelonycha elongatula Schönh., Thy malus fulgidus Er. (Larve in Polyporus betulinus) , Trogosita corti- calis Melsh.; Ipsfasciatus Oliv. 49 Schädlinge der Caryaarten zählt Harrington auf. Nach Forbes (') erlitt in Illinois 1884 das Korn Schädigungen durch Hippo- damia macidata Deg. und Chaetocnema pulicaria Gr., der Erdbeere schadeten Paria aterrima Oliv., Scelodonta nebulosa Lec. nnä pubescens Melsh. (Figg.), dem Apfel Crepidodera helxines L., dem Ulmus americanus Saperda tridentata Oliv., dem Solanum melongena Crepidodera cucumeris Harr., der Weide Plagiodera lap- ponica und Crep. helxines. Derselbe {-, 3) bespricht u. A. die Erdbeerschädlinge Cotalpa lanigera, Otiorrhynchiis sulcatus, Tyloderma fragariae, Paria sexnotata n. aterrima und Lachnosterna sp. Bruner behandelt den Schaden an Weiden und Pappeln in Nebraska durch Plagiodera scripta Fbr. Werner behandelt Zabrus gibbus F. (Roggen, Weizen, Gerste, Hafer), Silpha opaca L. (Mais), Nitidula atrata hsLiv. (Mais), Pityophagus quadriguttatus Say (Zuckermais), Trogosita cara- boides L. (Mais), corticalis Melsh. (Mais), Cucujus {Laemophloeus) testaceus Fbr. (Weizen), minutus Ol. (Mais), Silvamis surinamensis L. (Weizen, Roggen, Mais, Reis), Melolontha vulgaris Y., Anisoplia austriaca Hrhst., fruticola Fbr. (Weizen, Roggen), horticola L. (Weizen, Mais), Agriotes lineatus L., ohscurus Gyll., Me- lanotus niger Fbr. (Mais), Ptinus Zeae Bon. (Mais), Anobium paniceum Fbr. (Mais), Tenebrio molitor L. und obscurus Fbr., Blaps americana, Crypticiis quisquilius Payk. (Maiswurzeln), Tribolium ferrugineum Fbr. (Mais), Sitophilus oryzae L. (Reis), granarius L., Sphenophorus cariosiis Ol. und zeae (Maishalm), PhyUotreta vittrda [Gevste;, Crioceris melanopus L. (alle Getreidearten, Lema cyanella h., Systema bla7idaM.ehh. (Mais) und Calamobitis marginellus Fbr.; ein Kornfeind ist nach Osborn (*) auch Diahrotica longicornis. Feinde des Kohls vergl. Oestlund [Haltica, Crioceris). Anthonomus musculus schadete nach AnonymuS (') den Erd- beerfeldern in Staten Island, N. Y. In Nord-New-York und Nord-Maine rich- teten nach Packard ('■^) Hylurgops au Abies, Monohammics confusor Krby. (Ei, Larve und Fraßgänge Figg., das Ei liegt horizontal in der Kammer) an Pinus, 8. Hexapoda. XV. Allgemeine Insectenkunde etc. 553 Glycohius sjjeciosus Say (Gänge beschrieben) an Acer, und Saperda calcarata Say an Populus in Casco Bay Zerstörungen an. Nach Vadäszfy fand sich im Winter 1881-82 Cerambyx Scopolii Fueßl. in Buchenholzscheiten zu 10-15 Stück, auch ein noch ganz weiches Exemplar, so daß man annehmen kann, die Larve lebe in diesem Holze. Mc Murrich fand in schwarzen Warzenauswüchsen der Kirschen und Pflaumen in Ontario Larven von Conotrachelus nenuphar Hrbst. (Larve Fig.) = Rhychoenus cerasi Peck; die Warzen müssen ausgeschnitten und verbrannt werden. Kohlfeinde siehe Riley (^j , Kartoffelfeinde Karsch (^j . Phyllotreta vit- tata Fbr. lebt nach Riley (^) auch auf Sinapis, Capsella, Mattbiola, Hesperis, Fh. Zimmermanni Crotch auf Lepidium virginicum ; Verf. constatirt Plagiodera scripta Fbr. (Fig.) für Populus monilifera, Mallodon melanopus L. für Celtis, Quercus virens, aquatica, catesbei, Anomala varians Fbr, und Paria nigrocyanea als Schä- diger der Weizenfelder in den Hochlanden, Sphenophorus robustus Horu für Bay- borough, N. C, sculpiilis als Zerstörer von 60 Morgen Korn in Iowa, Calandra oryzae für Florida, Doryphora decenilineata Say und Haltica striolata für Missouri, .^mwM^ws /w^^m Hörn für Worcester, Mass., auf Azalea und Cissus, Pristoscelis «ife>- Bland, als in Fresno County, Cal., Pfirsichblätter fressend. Über Galeruca xanthomelaena vergl. Riley (i). Vergl. ferner *G. Dimmock, Goditig (S^ , Ormerod. Nützliche Käfer sind nach Garman Hippodamia glaeialis, Megilla maculata und Coccinella 9-notata als Feinde der Aphis maidis Ftch. — Beschützer der Eiche siehe Peragallo, Vertilger des schädlichen Coroebus bifasciatas siehe unten p 544. Die Carabidenlarve Leptotrachelus dorsalis Fbr. stellt der Isosoma tritici Riley nach ; Bruner. Feinde der Aphis mdidis Ftch. sind nach Garman Hyperaspis signata Oliv, und Cyclonoda sanguineah. Im Laubwald werden nach Keller die Eier der schäd- lichen Phyllobiiis, Polydrosus und Metallites von Spinnen Thomisus, Clubiona, Micryphantes, Tetragnatha) aufgesucht. Vergl. Moleyre [Calandra, Ergates) und ferner die Abschnitte »Medicinische Anwendung« auf p 225 und »Lebensweise etc.« auf p 226. 9. Hymenoptera. Nach Packard (^) leben auf Quercus schädigend Tremex colianbali., Callaspidia qii.-globulus Ftch., Cynips oneratus Harr., qti.-ßcus Ftch. und semmafo;- Harr.. qu.-tuber Ftch., qu.-arbos Ftch., qu-batatus Ftch. und 64 andere nur mit Namen aufgeführte, auf Ulmus Cimbex americana Lch. und 2 nur genannte, auf Carya Se- landria sp., auf Juglans cinerea Seiandria caryae (^ und Q. beschrieben (Figg.j, Nematus similaris Nort. (Ei, Larve, Cocon, Image Figg.), auf Acer Tremex co- lumba L. (Fig. der Larve), auf Tilia 1, auf Betula 3, auf Prunus serotina 2, auf Alnus serrulata 1, auf Salix 13, auf Pinus (strobus, rigida etc.) Urocerus abdo- minalis Harr, und albicomis Yhr . , Lophyrus Abbotii Lch. (Larve, Puppe, Imago Figg.), abietis Harr., Lecontei Ftch., jnni- rigidae Norton, Lyda sp. (auf «the Aus- trian pine«, Larve Figg.), Lophyrus sp. auf Pinus picea in Brunswick, Me., auf Abies (nigra und alba) Lophyrus abietis Ravr., auf Larix americana Lophyrus sp., auf Thuja occidentalis Lophyrus abietis Harr. Als Schädiger des Weizens in Il- linois führt ForbeS (^) [vergl. oben p 341] auf Isosoma grande Riley, tritici Riley (Fig.) mit dessen ? Parasiten Eupehnus allynii French (Fig.), der Erdbeere Emphytus maculatus Nort. (Fig.), der Brombeere und Himbeere Jfetoite (n. g.) rubi (n. sp.) Imago und Larve, Verwandlung im September (Figg.), von Apfel und Birne Dolerus arvensis Say [bicolor Beauv.) (Figg.) , auf Robinia pseudacacia Nematus robiniae n. sp. [eine handschriftliche Bemerkung des Herrn Forbes identificirt die Art mit N. similaris Nort.], auf Kirsche Nematus ven- tralis Say, Seiandria cerasi Peck. Nach A. K. DimmoCk lebt auf Betula Tremex columba L. und ausschließlich auf Betula Croesus latitarsus Nort. und Xyphidria 554 Arthropods . . attenuata Nort. (B. nigra) , ihr Parasit Rhyssa humida. Als neu constatirt Riley (2) das Vorkommen der Cimhex americana Lch. (Fig.) auf Salix, bildet ab Larve, Puppe, Imago und Wohnung der Isosoma grande Riley (1884) und verzeichnet Seiandria vitis Harr., Seiandria sp. auf Prunus und eine dritte auf Fraxinus ame- ricana von Missouri. Nach Packard (2) zerstörte Nematus Erichsonii die Lärchen in New-England und New-York. Nach Bruner schaden 2 Seiandria sp. dem Grase auf niedrigen, feuchten Wiesen an verschiedenen Orten von Elkhorn Val- ley und in den Thälern von Loups, und ist Cimhex americana den Pappeln und Weiden von Nebraska schädlich. Werner behandelt als Getreidefeinde Cephus pygmaeus L., Eurytoma albinervis Lind., Riley (^) desgleichen Isosoma hordei, tritici, grande. Conf. Humbert, Goding (', 2), Ormerod. Parasiten des Coroebus bifasciatus Gast. & Gory sind nach Peragallo Ephialtes carbonarius Grav. (Fig.), Cryptus Dianae Grav. (?) , sein Feind Cerceris bupre- sticida Duf., Parasiten ^qx Isosoma tritici Riley nach Webster Stictonotus isosomatis Ril. , Eupelmus allynii French, Parasit einer Tenthredinidenlarve auf Weizen und Gras in Bloomington, Bl., Ophion sp. — Elaptus aleurodis n. sp. nach Forbes (^) Feind von Aleurodes aceris n. sp. Riley (^) beschreibt Pleurotropis Phyllotretae n. sp. (J^, Q als Parasiten der Phyllotreta Zimmermanni Crotch. Nach Demselben ist Apanteles glomeratus L. aus Europa nach Nord- America importirt und läßt sich seine allmähliche Verbreitung (Baltimore — Washington) verfolgen (p 323). — Cfr. Moleyre [Myrmecocystus). Über Caprification und Blastophaga grossorum Grav. vergl. Peragallo p 174-177. Über neue Parasiten von Cecidomyia destructor siehe Diptera. Vergl. ferner den Abschnitt »Schaden und Nutzen« auf p 345. 10. Hemiptera. Nach Packard (^) schädlich auf Quercus Cicada septemdecim L. (Eiergelege, Larve, Puppe, Imago Figg.), Thelia univittata'RsiYY., Eriosoma ^«emFtch., Leca- niimi quercifex Ftch., Phylloxera rileyi Lichtenst. und 3 nur nominatim auf- geführt, auf Ulmus Colopha ulmicola Ftch., Eriosoma rileyi Thom. und 2 nomi- natim, auf Carya Lecanium caryae Ftch., Eriosoma caryae Ftch., Lachnus caryae Harr.. Phylloxera caryaecaxdis, caryaevenae, cai-yaefoliae Ftch.., caryaesemen,caryae- globulae Wlsh., spinosa, caryaesepta, forcata, depressa, co7iica Schiva., caryaegum- mosuy caryaeren, caryaefallax Ril. , Callipterus ? caryellus, ? punctatellus , ? macu- lellus Ftch., fumipennellus, mar ginellus Ftch.., Jassus inoratus Say, Diedrocephala quadrivittata Say, Uroxiphus caryae Ftch., Telamona unicolor, fasciata Ftch., Ceresa brevicornis Ftch., Cixius cijictifrons , colaepeum Ftch., Otiocerus amyotii Ftch., Rhaphigaster pensylvamcus De Geer, auf Juglans cinerea Aspidiotus [Myti- laspis) juglandis Ftch., Lecanium juglandif ex Ftch., Euchenopa binotata^3iY, Ojjhi- derma mcra Say, Clastoptera obtusa Say, Tingis juglandis Ftch., auf Castanea vesca Smilia castaneae Ftch., inornata Say, Callipterus castaneae Ftch., Phylloxera castaneae Haldem., von Acerarten 5, von Populus Pemphigus populicaulis, popu- laria, populi-globtdi, populivenae Ftch. und 7 nominatim von P. monilifera, von Tilia2, von Betula Athysanus variabilis, minor, fenestratus Ftch. und 5 blos nomi- natim aufgeführt, von Fagus 2, von Liriodendron 2, Negundo 2, von Prunus virginiana 1. americana 1, von Pyrus 1, Crataegus 2, Liquidambar 1 ?, Dios- pyrus 2, Fraxinus 1, Ostrya 1, Alnus 2, Salix 9, von Pinus (strobus. rigida) Coccus pinicorticis Ftch., Lachnus strobi Ftch. ^ Aphrophora parallela 8ay , sarato- gemis Ftch. (an den Zweigen) und var. (an den Blättern), Clastoptera jntii, testacea Ftch., Bythoscopus strobi Ftch. , Ca7naranotus confusus'H.iT&chl.vSLr occidentalis, Tetti- gonia spec, Cixixis piniFtch., Diraphia vernalis Ftch., Schizoneura pinicolal^hom.. Chermes pinifoliae n. sp., Mytilaspis pinifoliae Ftch. (cf , 2 Figg.)- Capsus cla- vaius L., sowie Chermes pinicorticis Osborn an »skotch pine«, aufAbies (nigra und ' 8. Hexapoda. XV. Allgemeine Insectenkunde etc. 555 alba) Adelges abieticolens Thom. (Figg.), abietish., Lachnus ahietis Ftch., Athy- sanus abietis Ftch., Lecaniuni sp. an den Blättern, auf Juniperus communis Lachnus sp., auf Larix americana Lachnus laricifex Ftch., Chermes laricifoliae Ftch., auf Sequoia gigantea Gonops ßssunguis Lee, auf Bay Magnolia Psylla magnoliae A'&hm. Auf Betula leben nach A. K. Dimmock [s. o. p 368] Eriosoma tessellata Ftch., CalUpterus betulaecolens Ril.-Mon., Calaphis betulella Wlsh. (B. nigra), Athysanus variabilis, abietis, minor, fenestratus Ftch., Thelia univittata Harr. (B. alba), Euchenopa binotata Say (B. alba), Bythoscopus setmnudus Sny, Tingis juglandis Ftch. Nach Forbes (') [s. o. p 369] schaden dem Korn Jassus inimicus Say, Cicadula nigrifrons n. sp., quadrilineatus n. sp., Macropsis nobilis, dem Weizen Cicadida nigrifrons n. sp. (Figg.) Mai bis August und quadrilineatus n. sp. (Figg.), dem Sorghum schadet Chaitophorus ßavus Forb. (Figg.), Coccus sorghiellus n. sp. ^, dem Klee Coccus trifoliin. sp. (Figg.), der Erdbeere Sipho- nophora minor Forb., Lygus lineolaris Beauv. (Fig.), auf Apfel- und Birnbaum Aphis mali Fbr. (= ? malifoliae Ftch.) und Trioza pyrifoliae n. sp., der Johannis- und Stachelbeere Empoa albopicta Forbes, auf Acer dasycarpum Pulvinaria innu- merabilis Rathvon, Aleurodes aceris n. sp. (Fig.) von Tamaroa, Süd-Illinois (cf. Hymenoptera), Lygus invitus Say (Fig.), auf Ulmus Schizoneura rileyi Thos., Le- caniuni sp., Typhlocyba tricincta Ftch. Dem Weizen schaden nach Webster [s, o. p 374] Thyreocoris ptilicarius Germ. (Beschreibung der Eier), Lygus lineolaris Beauv., Riley(^) [s.o. p 37 3] gibt Abbildung der zierlichen tönnchenförmigen Eier der kohlfeindlichen Murgantia histrionica Hhn. (nat. Feind : Leptoglossus phyllopus) und constatirt Trichobaris trinotatus Say als Zerstörer von ^ 3 der Kartoffelernte in West-Chester, Pennsylvanien. Werner behandelt als Getreidefeinde Aelia acuminata F., Lygaeus leucopterus Say, Nejia cinerealj., Schizoneura veimsta Pass., Amycla fuscifrons Koch, Tychea setulosa, trivialis Pass., Ajjhis granaria Kirby^ Avenae Fhr.j Äfaydis Harr . , Zme Rösler, Maidis Ftch., Zeae BonaL, Jassus sex- notatus Fll., Coccus [Zeae-)Maidis Duf. Peragäilo bildet ab Ceroplastes rusci L., schädlich der Feige und Vorläufer der »Morphee« (einer Cryptogamenkrank- heit). Pest der Cacao- und Cinchona-Pflanzungen auf Ceylon ist nach Distant und Trimen Hehpeltis antonii , von Java importirt. Nach Anonym {^) waren die Hauptfeinde 1884 in Nord-America Pulvinaria innumerabilis und Cicada septem- decim. Nach Heyden haben sich die Infectionsheerde der Phylloxera in der Preuß. Rheinprovinz 1885 vermehrt, die Verbreitung ist aber eine langsamere als in den südlichen Ländern. Über Blissus leucopterus in Iowa handelt Goding (1, 2)^ in Nebraska als Grasschädiger Bruner [s. 0. p 368]. Nach Baudisch be- fällt Lecanium racemosum Ratz, nicht blos kranke, sondern auch gesunde Fichten. Chermes abietish., in der Form coccineus mit 2 Generationen je sommerlich, in der Form viridis mit nur 1 gallenbildend auftretend, wird nach Keller außer von Pha- langiden durch Tetragnatha extensa, Micryphantes rubripes, Theridium- und Xysti- cMsarten gefressen; Clubiona holosericea räumt besonders in Hopfenfeldern mit Aphis humxdi auf; die echten Spinnen leben mehr von den Eimassen, den ab- gelegten oder den von ihnen ausgepreßten; da eine Spinne pro Tag 10 Chermes 5 frißt, so ist der Einfluß der Spinnen auf die Gesundheit des Waldes größer als der aller auf dem gleichen Waldgebiete lebenden insectenfressenden Vögel ; die Chermes viridis werden von lichtliebenden Spinnen Linyphia montana, Theri- dium varians im August aufgesucht; Epeira diademata tritt der activen Ausbrei- tung wirksam entgegen, Agelena labyrinthica in den Anlagen ; Chermes laricis wird durch Linyphien, Theridien und Clubionen vernichtet ; Feind des Lecanium race- mosum ist Micryphantes rubripes ; 2 Q dieses vernichteten in 6 Tagen 300 Schild- lauseier und Larven ; der klebrige schwarze Überzug der Fichtenzweige ist kein Schildlausproduct, sondern ein Spinnenproduct (Excremente) ; Schizoneura lanigera 556 Arthropoda. hat in der Kreuzspinne , TheridiumsiYten und ? Milbenlarven gefräßige Feinde. Conorhinus sanguisuga Lec. in Oakland Cal. und Anna sptnosa als Feind der Pieris rajme Riley {-). Cfr. Humbert, Oestlund Murgantia, Aphis), Ormerod, Smith, Whitehead, "Uhler, Karsch (^j [Tychea PhaseoU Pass.) und ferner den Abschnitt «schädliches oder massenhaftes Auftreten« auf p 375. (11. Mallophaga.) 12. Diptera. Packard (^) verzeichnet von Quercus 1, von Carya 8, von Robinia pseudacacia Cecidomyia pseiidacaciae Ftch., rohiniae Haldem. Im. und Larve beschr.), von Acer 1, von Tilia 2, von Liiiodendron tulipifera 2, von Gleditschia triacanthus 1 , von Prunus serotina 1 , von Crataegus 1 , von Fraxinus 1 , von Cavpinus americana 1 , von Alnus serrulata 1 , von Salix 22 (9 Inquilinen in Gallen), von Piuus Diplosis resinicola O.-S. (Imago und Gallen Fig.), pinirigidae Pack. (Gallen Fig.) , von Taxodium distichum Cecidomyia cupressi- ananassa Ril. , von Catalpa Diplosis catalpae O.-S. Nach A. K. Oimmock leben auf Betula Mal- Iota posticataYhr., Lonchaea "! poliia ^aj (in Cambridge, Mass., aus Polyporus betulinus von Betula alba gezogen) . Forbes (') behandelt die Geschichte der Cecidomyia destructor (Figg.) von 1883 und 1SS4, ihre Feinde s^'md Semiotellus dcstrucior 8siy, Pteromalus pallipes n. sp. (Fig.), Pteromalus"^ fidvipes n. sp. (Fig., Tetrastichus carinatus n. sp. Derselbe bildet Cecidomyia tritici Kirby und Mero- myza americana Fitch als Weizenschädiger, Brosophila ampelophila Lw. als Feind des Weinstocks ab. Feinde des Kohls siehe Riley ^^j [Anthomyia, Oscinis n. sp.:. Derselbe behandelt eine 1884 in Louisiana und Missis.sippi beobachtete Simulium sp. (Fig.) und gibt Notizen zu Cecidomyia leguminicola Lintn. Webster behandelt Diplosis tritici Kirby in Indiana, Meromyza americana Ftch. (Parasit Heteropus ventricosus Newp.) und eine Diptere, welche die Weizenhalme in derselben Weise wie Meromyza afficirt 'p l()6). Werner behandelt als Getreidefeinde Cecidomyia destructor Say, tritici Kirby, cerealis Saut., aurantiaca Wagn.,_/?ai're Mgn., A^itho- myia coarctata Fall., Chlorops taeniopus Mgn , Herpini Guer. (glabra Mg.), Oscinis frit L., Siphonella pumilionis Bjerk., Phytomyza cinereiformis Hardy, Opomyza Jloriwi Fhr . , Hydrellia griseolaYW. Peragallo gibt Figg. zu Urophora cerasorum Mcq. und Syrphus hyalinatus Fall., dieser als Feind von Cocciden und von Acro- lepia citri. Nach Laugier hat Dacus oleae die Olivenernte 1880 in den Mittelalpen gänzlich vernichtet. Über Cecidomyia destructor in Central-New-York als Haupt- schädiger des J. 1884 handelt Anonym (-) und nach Smith wird bei Meriden, Conn., eine Cecidomyidenlarve (Fig.) der Birne schädlich; 10-20 in der kranken Birne geben ihr ein knolliges Aussehen , das sie leicht von der gesunden unter- scheidet. Nach Lindeman ^) ist Cecidomyia destructor Say in Rußland Landplage und schädlicher als in Nord- America , wo sie laut Riley's Bestimmung) nach Anonymus ('^) nun auch an der pacifischen Küste angetroffen ist. Nach Ormerod lebt Cecidomyia tritici auch auf Alopecurus pratensis und verursachte, daß von der Pflanze 1882 25%, 1883 5%, 1SS4 75% ohne Samen blieb. Cfr. Whitehead. Als Zerstörer der schädlichen Aphis mdidis Fitch coustatirt Garman Syrphus- larven, als Parasiten einer weizenverwüstenden Tenthredinidenlarve Webster eine Tachina sp., Packard (^) zog Tachina [Belvosia] bifasciata Fbr. aus Anisota ruhi- cundaYhw ;Bombycide), ForbeS (') Exorista infesta u. sp. :)Willistou) Q , rj^ ^'''^ LaphygmafrugiperdaGiWQXi. (Noctuide) in Fairmont Park, Philadelphia, A. K. Dlm- mock Morinia sp. aus den Larven von Ceruchus piceus Web. Coleopteron) . Vergl. ferner den Abschnitt »Schaden etc.« auf p 413. (13. Siphonaptera.) 8. Hexapoda. XV, Allgemeine Insectenkunde etc. 557 14. Lepidoptera. Nach Packard (') leben auf Quercus Xt/leuf es robimae Harr . (Eier, Raupe, Puppe beschrieben), Xi/l. [Cossus] querciperda Ftch., Clistpcampa disstria Hbn. [sijlvatica Harr.) (Ei, Raupe, Imago Figg), californica Pack., constricta Stretch, Gastro- pacha californica Pack., Phryganidea californica Pack. (Imago Fig., Raupe und Puppe beschrieben), Anisota senatoria Hhn.^ stigma Hbu. (Raupe beschrieben), pellucida Hbn. (Raupe beschrieben), Halesidota maculata Harr. (Raupe beschrieben), Heterocampa jiulv er ea (jXOiQ & Kohm^. (Raupe beschrieben), Phobetrum pithecium Sm. & Abb., Cosmia orina Guen., Telea polyphemus Hbn. (Seidenraupe Fig., nicht häufig genug, um schädlich zu werden), Catocala fratercula Gr. & Rob., Paraphia unipunctaria Haw., Aplodes mimosaria Guen., Sienotrachelys ap^^roxiniaria Gu6n., Endrojna bilinearia Fuck., peciinaria Guen. (Raupe beschrieben) , Metanema querci- coraria (ji\x€Yi., Lithocolletis hamadry adella Clem., fichella Clem. , Holcoce?-a glan- dulella Riley (Raupe, Motte Figg.) nebst 78 nominatim aufgeführten Spec. (Abbil- dung von Callochlora cAZom Imago); auf Ulmus Anisopteryx vernata Pack. (Ei, und alle Stände Figg.) nebst einer ihr verwandten Raupe, Eugonia subsignaria Hbn. (Imago Fig.), Epirrtia dilutata Hbn., Vanessa antiopa L., Grapta interrogalionis Fbr. (Raupe beschrieben) , joro^ne Gram. (Imago Fig.), comma Gram., Ceratomia quadri- cornis Harr., Hyphantria textor Harr, (alle Stände Figg.) und 15 nominatim auf- geführte Spec, auf Carya .^c^ms lunah., Citheronia regalisWon., Halesidota caryae Harr., Limacodes scapha Harr. (Imago Fig.), Tortrix rileyana Gvote, Acrobasis jug- landis Le Baron (Fig.), Thecla calanus Hbn., Ephijypophora caryanaYioh.. sowie 12 nach Chambers nominatim aufgeführte Spec, auf Juglans nigra Smerinthus juglandis Sm. & Abb., nebst 9 nach Chambers nominatim, auf Juglans cinerea Spilosoma virgi- nica Fbr. (alle Stände Fig.) -nebst 10 nominatim, darunter Grapholitha caryae Shim., auf Castanea vesca Eugonia alniaria Hbn., eine Raupe und S nominatim aufgeführte Spec, darunter Limacodes viridis Reakirt und Eugonia subsignaria Comst. , auf Robinia pseudacacia Depressaria robiniella Pack., Parectopa robiniella Ftch., Ge- lechia pseudacaciella Chamb., robiniaefoliella Chamb., Lithocolletis robiniella Clem., Eudamus tity r^is Fhr., Ecdytolopha insititiana Zell., Pempelia contatella Grote, auf Acer Aegeria acerni Clem. (alle Stände Figg.), Anisota rubicunda Fbr. (alle Stände Figg., cfr. auch Diptera), Hyperchiria io Fbr. (Raupe und Imago Figg.), Apatela americana Harr., Clisiocampa sylvatica , Lithacodes fasciola H.-Sch., Stegania pusttdaria Guen., Eutrapela transve>-sata Fack., Telea polyp/iemusHhn, , Platysamia cecropia h (Raupe Fig.), Ophiusa bistriaris Hhn. (Raupe beschrieben) , Incurvaria acerifoliellaFtch.. nebst 12 nominatim aufgeführten Spec, auf Pop. monilifera ^cro- nyctapopuURilej [lepusculina Gnen. ?) (Raupe, Imago Figg.) nebst 1 Sphingide, auf Populus (»poplar«) Cosstis cetiterensis hintu., Aegeria tricincta Harr., Biston ursaria Wlk. (Raupe beschrieben), Ichthyura albosigma Ftch., americana Harr., vau Fitch, auf Tilia Hibernia tiliaria Harr. Raupe, Imago Q'CfFigg.) nebst 12 nominatim, auf Betula 2 , auf Fagus ferruginea Hyperetis nyssaria Abb., nebst 2 nominatim, auf Liriodendron talipifera 4 , auf Magnolia umbrella Phyllocnistis magnoliella Cham. (= "? pliriodendronella Clem. j , auf Asimina triloba 2, Zanthoxylum 1, Ailanthus glandulosus 2, Aesculus glabra 6, Negundo aceroides 1, Gleditschia triacanthus 6, Prunus serotina 19, virginiana 2, americana 4, Amelanchier cana- densis 2, Pyrus americana 1, Crataegus 12, Liquidambar 4, auf Nyssa multiflora Darapsa choerilus Gram., auf Diospyrus virginiana 2, Fraxinus 12, Sassafras officinale ü, Platanus occidentalis 9, Corylus americana 6, Ostrya virginica 11, Carpinus americana 1, Alnus serrulata 8, Salix 43, auf Pinus (strobus, rigida etc.) Nephopteryx [Pinipestis] Zitmnermanni Grote, Aegeria pini Kellicott, Retinia (?) comstockiana Fernald (alle Stände nebst Wohnung Figg.), frustrana Sc. (desgl.), 558 Arthropoda. rigidana Fernald, Thecla niphon Hbn., Ellema coniferarum Sm., Harrisii Clem., jpineum Lintn., Eacles imperialis Dr., Citheronia sepulcralis Gl'ote & Robinson, Pla- tycerura furcüla Pack.. Parorgyia parallela Gr. & Rob., Spilosoma virginica Fbr., Faraphia subaioniaria Guen., Cleora pulchraria Minot, ferner 3 Spannerraupen (be- schrieben) auf Pinus picea bei Brunswick, Me., und Amherst, Mass., eine Pyra- lidenraupe (beschrieben) auf Pinus picea bei Brunswick, Me., eine dem Moose gleichende Spannerraupe in Cambridge, Mass., eine Noctuidenraupe bei Salem, Mass., alle auf Pinus picea, und Tortrieidenröhren (Fig.), welche nach dem j)Appendix« zu Tortrix politana Haworth ? gehören; auf Pinus rigida Gelechia pinifoliella Chamb. (alle Stände und die Minen Figg.), auf Pinus taeda Tetralopha diluculella Grote, auf Abies nigra und alba Eacles imperialis Hbn., nebst 6 unbe- stimmten Raupen, auf Abies balsamea Orgyia leucostigma Sm.-Abb. (alle Stände Figg.), GelecUa pinifoliella Chamb., 3 Spanner- und 3 Noctuidenraupen in Maine, ferner 1 Spannerraupe, in Maine, August, einem trockenen Zweige äußerst ähn- lich, und 1 Spannerraupe von Brunswick, Me., August, auch auf Juniperus com- munis lebend, als bemerkenswerthester Fall von Mimicry; auf Abies canadensis 2 unbestimmte Raupen , auf Abies bracteata Grapholitha bracteatana Fernald , auf Juniperus virginianus Drepanodes varus Gr. & Rob. (Raupe mit Mimicry, Puppe, ImagoFigg.), Thyridopteryx ep/iemeraeformisB.a,woYth, auf Juniperus communis Eu/.tthecia misendata Grote , Dapsilia ruiilana Hhn. (alle Stände Figg.) , Drepa- nodes varus Gr. & Rob., nebst 3 unbestimmten Raupen (l Eule und 1 Spanner) von Maine, aufLarix americana iojö^ocampa caryae, Arctia quenselii, Tolype laricis Ftch. , Eacles imperialis Hbn., Samia Columbia Caulfield , auf Thuja occidentalis Buccidatrix thuiella Pack. (Imago und Cocon Figg.), Callosamia promethea Dr., auf Sequoia gigantea Bembecia sequoiae Edwards, auch auf Pinusarten und Sequoia sempervirens sehr verderblich. Nach A. K. Dimmock leben auf Betula Amphidasys ^ognataria Guen., Cymatophora crepuscularia Tr., Ephyra pendidinaria Guen., Anagoga pulveraria L., Endropia armataria H.-Sch., Eugonia alniaria L. (= magnaria (jWQn.) , Catocala relicta W\]s.., Orthosia instabilis Fbr. (= Taeniocampa incerta Hbn.), Apatela xyliniformis Guen., brumosa Guen., dactylina Grote, ameri- cana Harr., vulpina Grote, spinigera Guen., occidentalis Gr. & Rob., Charadra propinquilinea Grote, deridens Guen. , Gastropacha amenca?»« Harr. , Clisiocampa silvatica Hai'r., Anisota senatoria Abb. & Sm., Hyperchiria io Fbr., Attacus cecropia L., promethea Dr., polyphemus Fbr., luna L., Coelodasys unicornis Abb. & Sm., Notodonta concinna Abb. & Sm., dictaea L. (= Pheosia rimosa Pack.), Datana ministra Dr., Limacodes scapha Harr., Phohetron pithecium Abb. & Sm,, Orgyia leucostigma Abb. & Sm., Hyphantria textor Harr., Spilosoma virginica Fbr., isabella Abb. & Sm., Ceratomia amyntor Hbn. [quadricornis Harr.), Smerinthus excaecatus Abb. & Sm., Limenitis artemis Dr., Vanessa antiopa L. , Papilio turnus L., aus- schließlich auf Betula leheti nur Paraphia subatomat-ia Guen. , Brephos infans Möschler , Platypteryx bilineata Pack. (B. alba) , Cossus sp. (B. populifolia) und Drepana STß. (B. alba) bei Cambridge , Mass. Nach Forbes (^) sind Kornfeinde Crambus see^^Ms Fernald (Fig.) (schädlich in Maine, Pennsylvanien, West- Virginia, Illinois und Missouri , ihr Feind Pterostichus Sayi und Milben) , Dichelia sulphurea Clem. (Fig.) polyphag, Lophoderus triferanus Wlk. sehr polyphag , Feind des Weizens Laphyma frugiperda Gudn. (ihr Parasit cfr. Diptera) , Feind des Klees Cymatophora crepuscidaria Fr. (Fig.) , Haematopis grataria Fbr., Dichelia sul- phureana Clem., Cacoecia rosaceana Harr., Tortrix palloranaRohs. , Hypena scabra Fbr., Feind der Weintraube Petrophora diversilineata Hbn., Feind der Brom- und Himbeere Pyrrhia umbra Hbn. (hat wahrscheinlich 2 Brüten), Oxyptilus delavaricus Zell. (Fig.), Feind dieser und der Erdbeere Lophoderus vehitinanus Wlk., des Kohls Agrotis c-nigrum L. (Fig.), von Apfel- und Birnbaum Datana contractu 8. Hexapoda. XV. Allgemeine Insectenkunde etc. 559 Wlk., Biston ypsilon n. sp. (Raupe und Imago Figg.), vom Apfel Cacoecia rosa- ceana Harr., Pempelia hanimondi Riley (Fig.), Feind des Acer dasycarpum Cacoecia rosaceana Harr., Pandemis lamprosana Robs. (Fig.), der Zwiebel Spilosonia virginica Fbr. , der Weide Apatela oblinita , Orgyia Icucostigma ^m., der Johannis- und Stachelbeere Eccopsis ezoletum Zell. (Raupe neu beschrieben, verpuppte sich am 9 . Juni im Blatte und lieferte am 1 6 . die Motte! . Feinde des Kohls siehe Riley (^) . Derselbe beschreibt die Eier der Gelechia cerealella Oliv. (Fig.), und als neuen Feind der Frucht der Preisseibeere Acrobasis vaccinii n. sp. (Ei, und alle Stände Figg.) p 71-73; nach Demselben frißt Oedemasia concinna Sm. & Abb. in Oregon das Laub junger Apfelbäume, Deilephila lineata Fbr. die Blätter der Johannisbeere, Stachelbeere und Pflaume, findet sich Sphinx catalpae in Selma, Alabama, auf Catalpa bignonioides, Gortyna nitela auf Cacalia suaveolens, Pieris rapae auf Tropaeolum (siehe auchHemiptera), GraphoUtha pruni- vora Walsh in Aphidengallen von deren Secreten lebend, Clisiocampa americana ? Harr, als Zerstörer der Fruchtbäume in Salt-Lake und Utah, und wird Heliothis von Oxyopes viridans und Clubiona pallens gefressen. Werner behandelt als Ge- treidefeinde Acronycta rumicis L. (auf Sorghum im öcon.-bot. Garten zu Poppels- dorfj , Hadena [Apamea] basilinea W. V. (Mais , Weizen , Roggen) , infesta Treitschke, ochroleuca W. V. (Weizen), Pyralis secalis L. ["^.Hadena didyma Esp.), Ephestia Kühniella Zell., Tapinostola frumentalis Lind., Agrotis segetum, Clau- des tina Harr., crassa Hbn., corticea W. V., fumosa W. V., exclamationis L., ypsilon Hufn., tritici L., praecox L,, Charaeas graminis L., Plusia gamma \j., Leucania albilinea Guen., obsoleta Hübn., unipuncta Haw., Zeae Dup., Celaena herbimacula Green, Heliothis armigera Hbn., Botys nubilalis Won. (Hirse, Mais), quadripunctalis Schiff., ruralis Scop., Asopia farinalis L., Tinea granella L., Zeae, Coleophora tritici YAn^., Tinea [Butalis, Alucita, Sitotroga) cerealella Oliv., Ochsenheimeria taurella Schiff., Gelechia pyrophagella Koll. PeragallO bildet /no ampelophaga Bayle von Vitis und Myelo'is ceratoniae Z. ab. Hauptschädling der letzten Jahre war in Nord-America nach Anonymus (^) Agrotis fennica, für 1884 characteristisch Agrotis messoria (bei Goschen, N. Y., der Zwiebel verderblich), Eurycreon rantalis (zuerst 1867 in den Weststaaten erschienen, in Kansas 1873 auf Amaranth gemein, jetzt auch an anderen Pflanzen in Texas, Indian Terri- torium, Kansas, Arkansas, Iowa und Nebraska schädlich), endlich Sesia [Podo- sesia) syringae oft zu 100 und mehr in einem Stamme. Nach Packard ("^j trat Steganoptycha ratzeburgiana Sax. auf Abies alba und nigra auf Squirrel Island, Booth Bay Harbor, Maine schädigend auf. Nach Lindeman (^) ist Coleophora triticilAndi. seit 1880 verschwunden. Nach Bruner haben ^yro^/s «««cm und Piem rapae dem Grase niedriger feuchter Wiesen auf verschiedenen Stellen in Elkhoru Valley und den Thälern von Loups geschadet und ist Gortyna nitela als Schädiger des jungen Kornes in Nebraska 1884 aufgetreten, dieselbe Art nach Webster bei Bloomington, 111., am Hafer. Ormerod liefert eine kartographische Dar- stellung des Auftretens der Charaeas graminis , die in Glomorganshire im Sommer 1884, namentlich in Gebirgsgegenden, in Myriaden von Raupen erschien. Vergl. ferner Goding (i, ^), Humbert, Oestlund, Smith, Whitehead. Im Laubwalde stellen nach Keller Thomisus, Clubiona, Micryphantes und Te~ tragnatha den Eiern von Wicklern und Spannern nach. Vergl. auch Moleyre [Agrotis] und ferner oben p 474 den Abschnitt Öconomisches. Register. Aufnahme haben gefunden: die Autoren; alle Untergattungen, Gattungen (n. = novum, n. n. = nomen uovum) und höheren systematischen Begriffe ; alle anatomischen , embryologischen , biologischen , faunistischen etc. Angaben und zwar unter folgenden Stichwörtern, auf welche zahlreiche Verweisungen eingefügt sind : Ana- tomie (allgemeine), Stamm, Extremitäten, Integumeutgebilde, Haftapparate, Körperanliänge, Nerven- system, Sinnesorgane, Mnskelsystem, Skeletsystem, Circulationssystem, Leibeshöhle, Kespirations- System, Excretionsorgane, Yerdauungssystem , Geuitalorgaue, Sexualcharactere (secnndäre) , Poly- morphismus, Abnormitäten — Histologisches - Chemisches, Leuchten und Leuclitorgane, Electrische Erscheinungen und Organe — Ontogenetisches — Phylogenetisches — Physiologisches, Psychologisches, Pathologisches, Regeneration — Bioconotisches, Biologisches, Locomotion, Tonapparate u. Tonerzeu- guug, Fortpflanzung, Sympathische Färbung — Faunistisches, Paläoutologisches — Systematisches — Nutzen und Schaden — Technisches, Nomenclatorisches. Aaron, E. M. 442. Aaron, E. M. & S. F. 442. Aaron, S. Frank IGT. Ababactus n. 247, 249. Abacetus 238. Abatocera 317. Abax 239. Abeille de Petrin, Elzear 204. Abia 347. Abirus 326. Abisara491, 505. Abispa 363. Abiattaria 257. Abnormitäten. Apidae 345 — Coleoptera 225 — Hemiptera 375 — Lepidoptera 476. Amnionbildung Apis 150 — Geschlechtsleben Ara- chnidae 77 — Hermaphro- ditismus Callinectes 28, Cambarus 28, Erigonel03, Lepidoptera 476. Abraeini 259. Abraeus 259, 260. Abraxas 415, 529, 530, 548. Abrimus 285. Abromus 268. Abrota 502. Abzaria n. 357. Acalles 296, 299, 300. Acalypteratae 432. Acalyptus 299, Acanthaclisis 184, 185, 190. Acanthephyra 45, 46. Acanthia 137, 152, 387. Acanthina 424. Acanthocaris 49. Acanthocercus 31. Acanthoderes 315, 317. Acantholipes 483, 526. Acantholophus lü8, 109. Acanthomeridae 420. Acanthoniscus 56, 57. Acanthophyes 392. Acanthopus 31. Acanthosina 380. Acanthosoma 414, Acanthotelson 59. Acanthozone 53. Acari 71, 83, 112, 113. Acarus 78, 79, 83. Acentropus 162. Acerata 5. Acercus 92, Acerophagus 351, Aceros 53. Acestrilla n, 316, 317. Achaea 483, 522, 524. Achaeus 50. Aeharana n. 533—535, Achenium 246. Acherontia 4, 163, 474-479, 481,487,488,511,547,548. Achorotile 393. Achorutes 165. Achroia 484. Acicnemis 299, 300, Acidalia 477, 483, 488-490, 529-531. Acidaspes 64. Acidaspidae 64. Acidostoma 53. Acidota 246. Acilius 245. Aeinia 435. Aciuopus 238. Aciptilia 485, 488, 541. Acis 109. Aeiura 434. Aclees 299. Acleros 491. Aclypea 257, Acmaeodera 276. Acmaeops 315, 316. Acocephalus 390, 391, Acodia n. 531. Acoelius 354. Acolophus n. 264, 265. Acompocoris 387. Acompomorpha 383, Acompse 98. Acontia 516, 526. Acontiina 522. Aconura 391. Acraea 478, 490-493, 495- 497, 501, Acraeinae491, 492, 497, 501. Acridiites 200, 202. Acrididae 194, 197, 198, 202, Acridites 179, 180, 183. Aeridium 133, 193, 194, 198, 549, 550. Acrisius 297. Acritus 259, 260, Acrobasis 484, 533, 534, 548, 557, 559, Acrocrypta 330, Resrister. 561 Acroeyum n. 330. Acrolepia 535, 547, 556. Acrometopa 198. Acronycta 483, 487, 488, 490, 521, 522, 557, 559. Acronyctidae 490. Acronyctina 521. Acroperus 33, 41. Acrophylla 197. Acroptera 417, 419, 429. Acrosoma 106. Acrotelus n. 389. Acrotoxa 434. Acrotylus 197. Actea 496, 514. Actias 482, 519, 557. Actidium 259. Actinacantha 106-108. Actineda 92. Actinopus 94. Actobius 247, 249. Aculeata 359. Acupalpus 237, 239. Acyphoderes 317. Adälia 337, 338. Adalmus 255, 256. Adela 539. Adelges 555. Adelium 290. Adelocephala 495, 519. Adelocera 277. Adelomorpha n. 539. Adelostoma 289, 290. Adelpha 502. Adesmia 289, 290, 292. x\detus 317. Adicella 185, 187. Adiphlebia n. 183. Adisura 526. Adlerz, Gottfr. 339. Adolph, E. 125, 405. Adomerus 380. Adonea 95. Adonia 337, 338. Adoxia 330. Adrama 432. Adris 483, 522. Adye, J. M. 442. Aedia 523. Aedilis 551. Aediodes 534. Aegeria 475, 479, 494, 495, 557. Aegeriadae 512. Aegidae 58. Aegina 52. Aegiochus n. 55. Aegoides 316, 317, 324. Aegosoma 226, 316, 317. Aeletes 259, 260. Aelia 379, 380, 555. Aelurillus n. 80, 98, 99, 101. Aeluropg 99. Aemene 496, 514. Aeolus 278. Zool. Jahresbericht. 1885. II. Aepocerus n. 351. Aepophilus 386. Aepycephalus 93. Aerenicopsis n. 316, 317. Aeria 495, 497, 498. Aeschna 2, 4, 133, 144, 171, 172, 178, 183. Aeschnini 178. Aesernoides n. 329. Aethia 524, 526. Aethina 262. Aethmia 483. Aetholinus 285. Aethophlebia n. 182. Aethriostoma 263. Agalissus 317. Agallia 391, Agalliastes 388. Agama 360. Agametis 299. Aganaidae 493. Aganaina 514. Aganais 514. Aganisthos 503. Agapanthia 315. Agapetus 187. Agapophytus 427. Agaricophagus 257. Agaristidae 491—493, 512. Agatarchus 379, 380. Agathidium 257 . Agathis 354, 358, Agbalus 326. Agdistis 541. Agelasta 317. Agelastica 330, Agelena 104, 555. Agelenidae 104. Agenia 361, 362. Agenius 275. Ageronia 502, 504. Agestrata 274, 275. Agetinus n. n. 326. Agetus 326. Aginna 523, 524. Aglena 390. Aglenus 264. Aglia 478, 482, 486, 519. Aglycideridae 313. Aglycoptera n. 273. Agnia 316. Agnostus 64. Agobardus n. 99, 101. Agonista 522, 523. Agonum 239. Agria 437. Agrianes 326. Agrias478, 496, 497, 503, 504. Agrilus 276. Agrion4, 171, 172, 177, 178. Agrionini 177, 178. Agriophara n. 539. Agriotes 278, 547, 552. Agrodes 249. Agroeca 96. Agromyza 413, 435, 548. Agromyzina 435. Agrotis 474-476, 479, 483, 485-487, 489, 495, 496, 523, 525,526,547-549,558,559. Agyrtes 257. Airaphilus 267. Akidoproctus 401, 403. Alaena501, 506. Alatnis 526. Alampyris 317. Alaus 277, 278. Albers, G. 204. Albertia 438. Albunea 49. Aleides 299, 300. Alcidinae 299. Alcidion 317. Alcidosoma 274. Alcmena 98. Aleiodes 354. Aleochara 248, 249, 251, 252. Aleocharini 247, 248. Aletes 326. Alethacius n. n. 326. Aletia 162, 525, Aletretia 316, 317. Aleurodes 395, 554, 555. Aleurodidae 395. Aleuropteryx n. 185, 188, Alexia 337. Alfken, D. 340. Allaeotes n. 300. Allantus 347—349. Allard, Ernest 204. Allecula 249. Alloceps 285, Allodactylus 298, 300. Allodia 421. Allodorus 354, 356, Alloeoscelis ii, 316, 317, Alloeotarsus n. 389. Allognosta 425. Allograpta 430. Allogynes 285, Alloneura 178. AUoniscus 57. Allopecosa n. 102. Alloptes 85, 86. AUorchestes 52. AUorrhina 275. Allotrichus n. 247, 249, Aloa 482, 516. Alona3i, 41. Alonella 41, 42. Alonopsis 41, Alope 482, 516, Alophus 297, 300. Alosterna 317. Alpheus 46. Alphinellus 317, Alphitobius 226, 289, 290. Altella 95. Altum, Bern. 367. Alucita 486, 489, 490, 559. 36 562 Hegrister. Alucitidae 494, 511. Alurnus 334. Alydus 381. Alymon 290. Alypia 512. Ainadus n. 299, 300. Amalus 298-300, 304, 306, 308, 309. Amans, P. C. 125. Amara 238, 239. Amartus 263. Amarygmus 290. Amasis 347. Amastris 530. Amathia 50. Amathilla 53. Amathillop sis 53. Amauris 490, 491, 497. Amaurobiidae 94. Amaurobius 95. Amaurocoris 380. Amaurorrhinus 300. Amblyops 43, 44. Amblypodia 505, 506. Amblysaphes n. 316, 317. Amblysterna 276. Amblyteles 357. Ambuly X 512. Ameles 196. Ameletus n. 176, 177. Amerila 516. Amerinus 240. Amesia492, 513. Amiantus 292. Amicta 520, 521. Amictus 428. Ammatho 514. Ammobates 364. Ammobatoides 364. Ammobiota n. 490, 517. Ammophila 361. Ammophorus 289. Ammothea 8. Ammotheidae 8. Amnosia 478, 493, 502, 504. Amoenia 438. Amorphocephalus 313. Amotara n. 351. Ampelisca 53. Ampelophaga 511. Amphelictus 316. Amphialus 30U. Amphibolia 438, 439. Amphichroum 247, 249. Amphicnaeria 317. Aniphicoma 273. Amphicyllis 257. Amphid'asys 477, 530, 558. Amphigerontia 174. Amphigonia 522. Amphigonüdae 492. Amphigoniina 522. Ampliimallus 272. Amphionthe 316, 317. Amphionycha 317. Amphipoda 16, 18, 19, 29, 30, 51, 58, 59. Amphipaocus 175. Amphipyrina 522. Amphisternus .337. Amphitape 530. Amphithoe 52. Amphithopsis 53. Amphotis 226, 262. Amphysotes 316. Amplipalpa 334, 335. Ampycophora 534. Amycla 555. Amycus 99, 101. Amydon 478. Amymone 37. Amyna 525. Amj'thetes 281. Anaballus 299, 301. Anabolia 187. Anacampsis 484. Anacampta 435. Anagoga 531, 558. Anaitis 529, 530. Anaiges 84-86. Analgesina 84. Analloptes n. 85. Anamathia n. 50. Ananca 296. Anaphe 415. Anarta 483, 495, 496, 526. Anartia 502, 504. Anaspis 295. Anastellorhina n. 43 S. Anastetha 316. Anastoechus 428. Anathymus n. 300,301. Anatis 337, 338. Anatolmis 512. Anatomie, allgemeine. Aletia 162 —Apis 148 — Astacus 25 — Canthocamp- tiis 19 — Geometridae 162 — Halarachne 68 — Limu- lus 6 — Mimonectes 30 — Scorpionidae 6 — Serolis 30 — Raupen von Yanessa u. Lasiocampa 475. Anax 178. Anceidae 16. Anceus 55. Anchacantha 107. Auchastus 278. Anchialus 43, 44. Anehinia 484. Anchithyrus n. 299, 301. Ancholeus 238. Anchomenini 239. Anchomenus 238, 240. Anchorella 39. Anchylopera 548. Ancistria 267. Ancistrocerus 364, Ancistrona 404. Ancylocera 317. Ancylopteryx 185. Ancylosis 535. Andania 52, 53. Anderson, E. 442. Anderson, J. 340, 367, 442. Anderson, Joseph, jun. 442. Anderson, E,. J. 443. Andraca 518. Andre, Em. 340, 443. Andremiaja 505. Andrena 346, 359. 365. Andrenosoma 427. Andricus 350. Androctonidae lln. Androctonus 6, 1 lU. Andrognathus 121. Androlyperus 330. Andromisus 314. Aneflus 310, 317. Anelasmocephalus 108. Anelastes 279. Anemadus 257. Anemeca 496, 502. Anemia 289, 290. Anempodiata 420. Anerastia 496, 535. Anereuthina 522, 524, Aneuma 301. Angelia n. 90. Angell, G. W. J. 204. Angerona 477, 531. Angitula 435. Anilocra 55. Anisochelus 273. Anisodactylus 238, 240. Anisodera 334. Anisodes 524, 529. Anisognathus 313. Anisolabis 196. ' Anisomera 245. Anisomerina 423. Anisopelma 354. Anisoplia 552. Anisopodus 317. Anisops 390. Anisopteryx 477, 483, 489, 547, 557. Anisosticta 337, 338. Anisota 482, 556-558. Anisotoma 257, 258. Aniusn. 300, 30 1. Anobium 287, 552. Anobiini 287. Anochilia 275. Anodapha 522. Anodontostoma 121. Anomala 273, 551, 553. Anomalipus 289. Anomalocerati n. n. 420, 441. Anomalopteryx 187. Anommatus 268. Anomoederus 301. Anomura 16, 17, 28, 45, 59. Anonymus 204, 345, 375, 473, 545". Register. 563 Anonyx 53. Anopheles 423. Anophia 523, 526. Anophthalmus 238, 240. Anoplitis 85. Anoplophrya 30, Anoratha 523. Anoterostemma n. 391. . Anotheorus 300. Anpassung s. Biologisches. Anrep-Elmt, R. 443. Ansibaris 257. Antarctia 240, 496. Antarctobius n. 301. Antarctonomus 239. Anteacheres 39. Anterastes 199. d'Antessanty, G. 367. Anthaxia 276. Antheraea 482, 491, 519. Anthessius 38. Anthicidae 294. Anthicus 294. Anthidium 365, 366. Anthocharis 491, 507, 508. Anthocomus 285. Anthocoridae 378, 387. Anthocoris 387. Anthoecia 538. Antholinus 285. Anthomyia414, 415, 432,436, 547, 548, 556. Anthomyina 436. Anthomyza 413. Anthonomus 299-301, 552. Anthonominae 299. Anthony, A. C. 204. Anthophila 526. Anthophilax 552, Anthophilina 522. Anthophilodes483, 533, 535, Anthophora 346, 364, 414. Anthosoma 39. Anthracaridae n. 59. Anthrachomyia 438, 439. Anthracia 438. Anthracoblattina 201. Anthracomarti 71, 112, 113. Anthracomartus 113. Anthracoscorpii 114. Anthracothreuima n. 182. Anthracus 239. Anthrapalaemon 59. Anthrax 414, 42S. Anthribidae 313. Anthuridae 54. Antibothrus 265. Anticheira 273. Antidipnis 285. Antiga, ... 340. Antigonis 502. Antigonus 492, 510. Antilissus 265. Antineura 432. Antipha 330. Antiphodrus 240. Antispila 484. Antochina 423. Antroderus n. 265. Anydraula n. 533, 535. Anyphaena 96. Aora 30, 53. Apachiscelus 301. Apaeleticus 357. Apalochrus 285. Apalus 295. Apamea 496, 526. Apanteles 353-356, 554. Apate 288, 546, 551. Apatela 483, 495, 521, 557- 559. Apatolestes n. 426. Apatura 493, 502-504. Apaturina 502. Apaustus 491, 492, 494, 510. Apeltarius 301. Apenicillus n. n. 256. Aphaenogaster 346. Aphalara 394. Aphamartania 427. Aphaniptera 161. Aphantaulax 96. Aphaobius 257. Aphelinus 350. Aphelochroa n. 287. Aphendala 520. Aphenolia n. 262, 263. Aphidae 152, 155, 156. Aphididae 379, 395. Aphidina 395. Aphis 395, 396, 398, 547-549, 553, 555, 556. Aphlebia 196. Aphodiiis 131, 226, 271. Aphomia479; 484. Aphrastus 552. Aphria 438. Aphrophora 393, 554. Aphthona 330. Aphthonoides n. 331. Aphycus 351. Aphysotes n. 317. Apidae 364. Apilocera 317. Apiocera 417. Apioceridae 161. 427. Apion296, 298, 299,301,551. Apioninae 299. Apirocalus 299, 301. Apis 4, 5, 130, 134, 148, 150, 345, 346, 365, 366, 549. Apistosia 496, 514. Apistus 264. Aplodea 255, 256. Aplodes 483, 495, 531, 557. Aplotes n. 297, 301. Apobletes 260. Apocellaria n. 248. Apocellus 248. Apocheima 483. Apochrysa 185. Apocremnus 388. Apocrypta 351. Apocyrtus 299, 301. Apoderus 299, 301, 546. Apodiphiis 380. Apoleon n. 288. Apolephthisa n. 421. Aporia 437, 474, 507. Aporistus n. n. 326. Aporonotus n. 299, 301. Aporophyla 487, 489. Aporosa 423. Aporus 326, 361, 362. Apotomus 238. Apoxj-podes n. 114. Apparate s. Technisches. Apphadana 525, 526. Appias 476, 478, 479, 493, 507, 508. Apriona 317. Aprotopos 495, 49S. Apsectromerus n. 97. Apseiides 15, 16, 54. Aptera. Anatomie, Ontogenie etc. 142-144 — Biologie 165 — Faunistisches 165 — Literatur 164 — Paläonto- logie 166, 167 — Systema- tisches 165-167. Apterola 382, 384. Apterygogenea n. 140, 141, 165. Aptopus 278. Apus 15, 23, 42. Apusidae 42. Arachnidae. Anatomie, Ontogenie etc. 2, 5-7, 67-71 — Biologie 76-79 — Faunistik 79- 115 — Literatur 67, 71-76 — Paläontologie 112-115 — Systematik 82-115. Arachnocephalus 199. Arachnoideus 244. Arachnopus 299, 301. Aradidae 378, 385. Araeocerus 226. Araeoncus 103. Araeosternas 48. Aramigus 553, Araneae71,93,112, 113, 115. Arasada n, 483, 526. Araschnia 485, 493, 504. Arbela 521, Arcastes 330, 331, Archaeolepas 59, Archaeoptilus 181, 203. Archegogryllus 203. Archipolypoda 71, 124. Archomias 507. Arcte 523, 526. Arctia 482, 495. 496. 516, 517, 558. 36* 564 Rearister. Arctiidae 482, 492, 493, 496, 516, 521. Arctinae 516. Arctisconidae 83. Arctocoris 380. Arctonotus 511. Arctophila 414, 416, 430, 431. Arctophysis 256. Arcturus 55. Ardonea 496, 514. Areolarii 354. Arescus 334. Arete 46. Areus 249. Areva 496, 514. Argadesa 522, 523. Arge 500. Arges 64. Argeus 511. Argiope 106-108. Argiva 522, 524, 525. Argoa n. n. 326. Argod, ... 205. Argolis 326. Argopistes 331. Argoporis 289, 290. Argulidae 18, 39. Argulus 31, 39. Argutor 237. Argvnnis 475-477, 481, 487, 489-491, 494, 496, 502- 504. Argyramoeba 414, 417, 428. Argyresthia 484. Argyripa 275. Argyris 519. Argyritis 539. Argyrodes 105. Argyroepeira n. 107. Argyroneta 103. Argyronetidae 103. Argyrostola n. n. 539. Arhopalus 550, 551. Aria 438. Ariadne 94, Ariana 94. Aricia 436. Ariola 523, 525. Aristeus 46. Aristias 30, 53. Aristus 238. Avma 556. Armadillidium 57. Armadillo 57. Armadilloniscus 57. Armandia 5u9. Arnold, Carl 125. Arnold, N. 340. Aroa^n. Arpedium 247. Arphia 197. Arrhenurus n. 92. Arsacia 520. Arsinoe 504, 530. Arsipoda 331. Artasa 518. Artema 104, 105. Artemia 16, 42. Arthisma 522. Arthrolips 259. Arthropleuridae 58. Arthropterus 256. Arthrostenus 301. Arthrostraca 7, 15. Artichus 351. Artinspaza 317. Asagena 105. Asamonea 98-100. Asana n. 264. Asanada n. 122. Asaracus 98. Asbolus 257. Ascalapha 528. Ascalaphidae 183, 185, 189. Ascalaphus 189. Aschiza 419. Ascia 429-431. Ascinae 430. Ascogaster 354, 355. Asellidae 56. Asellus 18, 29-31, 56. Asemolea 317, 318. Asemum 551. Ashmead, W. H. 340, 367. Asilidae 161, 416, 420, 427. Asilina 428. Asilus 413, 416, 427, 428. Asopia 484, 533, 534, 536, 559. Asperia 92. Asphaera 330-332. Asphalia 521. Asphondylia 412, 420, 421. Aspidimerus 338. Aspidiotus 136. 155, 156, 399, 547, 554. Aspidomorpha 336. Aspidophoreia 53. Aspidosoma 281. Aspidosternum 289. Aspilates 496, 530, 532. Assimilation s. Physiologi- sches. Astacidae 31, 47, 59. Astacilla 55. • Astacus 2, 7, 23, 25-31, 47. Astaena 273. AstatopterjTC 259. Asterolecanium 400. Asterope 39. Asteroscopus 525. Asthena 477, 487. Asthenochirus n. 290. Astia 99, 101. Astrimus 316. Astynomus 231, 317, 546. Astyochia n. 496, 515. Asytesta299, 301, 312. Atactogenus 296. Ataenius 271. Atarphia n. 262, 263. Atavismus s. Phylogeneti- sches. Atax 92, 316. Atea 107. Atelacantha 107. Atella491, 502, 503. Atelodesmis 317. Atemnus 80, 109, 110. Atenizus 316. Aterica491, 502, 503. Aterpinae 299. Atethmia 495, 525, 526. Ateuchus 271. Athanas 46. Atherix 426. Athesis 495, 496, 498. Atheta 247, 249. _ Athmung s. Physiologisches. Athmungsorgane s. Respira- tionssystem. Athous 278. Athropeas 420. Athyma 494, 502, 504. Athyrtis 495, 496, 498. Athysanus390, 391, 554, 555. Atimeta 331. Atkinson, E. F. T. 367. Atkinson, J. C. 167. Atmore, E. A. 443. Atolmis 496, 515. Atomaria 267, 268. Atopida 280. Atrachycnemis 239. Atractocerus 287. Atractodexia n. 438. Atropini 175. Atrypanius 317. Atrytone 99. Atta 130, 360. Attacus478, 482, 488, 519, 558. Attagenus 79, 226, 269. Attalus 285. Attelabinae 299. Attelabus 299,550, 551. Attelestus 285. Atteva 539. Attidae 77, 93, 98. Attus 77, 79, 98, 99, 101. Atyephvra 27, 28. Atylotus 426. Atylus 53. Atypus 68, 77, 93. Aubeonymus 301. AudoUent, Paul 405. Auge s. Sinnesorgane. Aulacizes 390. Aulacophora 330, 331. Aulacopteron n. 237, 240. Auletes 299, 301. Aulexis 326. Aulocara 197. Aulocera 477, 499. Aulonia 102. Register. 565 Aulonium 264. Aulonogyrus 245. Aulonosoma 265. Aurivillius, Carl W. S. 8. Aurivillius, Christopher 167, 205, 443. Äusserer, A. 164. Austaut, L. 443. Australica 329. Autoceras 496, 515. Autocrates 288. Automerina 519. Autonoe 53. Aventia 525. Aviculariidae 93. Axinophorus 297. Axinotarsus 285. Axiopaena 482, 517, 526. Axius 48. Axylia 496, 526. Axyraeus 298, 301. Azazia 483, 522, 524. Bacanius 259, 260. Baccha 429, 430. Bacchinae 430. Bacillus 194, 197. Baconiä n. 260. Bacotoma n. 533, 536. Bactriola n. 316, 317. Badera 539. Baeocera 259. Baetis 171, 176, 177. Bagous 301. Bailey, G. 443. Bairstow, S. I). 443. Baker, G. T. 443. Balanidae 7, 36, 58. Balanini 298. Balanininae 299. Balaninus 298, 299,301,550, 551. Balanotis 533. Baianus 19, 36. Balbiani, E. G. 8, 125, 367, 405. Baiding, A. 167, 443. Baiding, G. 443. Ballostoma n. 166. Balkis 98, 101. Baly, J. S. 205. Balya 326. Bankes, E. R. 443. Bapta 530. Baptria 531. Barbiche, . . . 167. Barbier, Ch. & Fr. 205. Barbiger 379, 380. Barbitistes 198. Barclay, F. H. 443. Barfurth, Dietr. 1. Bargagli, Pierre 205. Baridinae 299. Barini 298. Baris296, 298, 299, 301, 305, 306. Barnard, G. 443. Barrett, Ch. G. 443. Barsine 530. Bartels, Max 71, 116. Barthelemy, A. 125. Baryodma 248, 249. Barypeithes 296, 302. Barypristus 239. Barystethus 300, 302. Barytachys 240. Baspa 506. Bastarde s. Abnormitäten u. Fortpflanzung. Bates, H. W. 205. Batesia 502. Bathyaspis 350. Bathyphantes 105. Bathyscia 257, 258. Bathytropa 57, 58. Batocera 316, 317. Batophila 330. Batrachedra 539. Batrachotetrix 194. Batrisus 255, 256. Baudisch, Friedr. 542. Bavia 98, 99, 101. Bdellorhynchus n. 85. Bean, Th. E. 443. Beaumont, Alfred 205. Beauregard, H. 125, 205. Beauvisage, G. E. Ch. 542. Beccaria n. 337. Becher, W. 443. Beck, E. J. 1. Beck, Günther 205. Becker, Alexander 205, 444. Becker, Leon 71. Beddard, Frank Evers 8, 444. Bedel, Louis 205. Bedelinus n. 238, 240. Bedfort, Pim H. 205. Befruchtung s. Fortpflan- zung. Begattung s. Fortpflanzung. Begattungsorgane s. Genital- organe. Behr, H. H. 444. Belba 89, 90. Belenois 476, 507, 508, Belgoraea 520. Belinae 299. Beling, Th. 205, 405. Belinurus 64. Belionota 277. Bell, James T. 205. Bell, F. Jeff"rey 191. Bellamira 552. Bellevoye, A. 340, 444. Beliier de la Chavignerie, E. 206. Belon, Marie Jos. 206. Belonuchus 247, 249. Belostoma 389. Belostomidae 389. Belotherus 289. Belotus 284. Belt, A. 444. Belus 299, 302. Belvosia 439, 556. Bembecia 558. Bembex 151, 361. Bembidiini 239. Bembidium 237-240. Bemmelen, A. A. van 167. Bendidae 492, 493. Bendina 522. Beneden, Ed. van 8. Benham, W. B. S. 1. Benson, H. 444. Benthesicymus 46. Bentheuphausia 43-45. Benthoecetes 46. Benthonectes n. 46. Beosaria 382. Beosus 382, 383. Bepara 496, 515. Beraea 185, 187. Berdura 256. Beregra 524. Berethia 299. Berg, Carlos 206, 444. Berge, A. 125, 206. Bergroth, Ewald 367. Beridina 425. Beris 424, 425. Berlara 256. Berlese, Anton. 116. Berosicus n. 299, 302. Berosiris 299, 302. Berosus 246. Berthelin, . . . 206. Bertkau, Phil. 67, 71, 125, 444. Bertula 524. Berytidae 378, 381. Berytus381. Bessaphilus 267. Bessler, J. G. 340, 542. Bettoni, Eugenio 72, 116, 167. Beuthin, H. 206. BeuttenmüUer, Wm. 444. Bewegung s. Locomotion. Beyerinck, M. W. 405. Beyrichia 59. Bianor n. 99, 101. Biantes n. 109. Biasoli, Karl 206. Biastes 364. Bibio 422. Bibionidae 422. Bidessus 245. Bieler, . . . 444. Bigneil, G. C. 340, 367. Bigot, J. M. F. 405. Bijugis 520. Billea 438. 566 Register, Billups, T. IL 367, 444. Bindegewebe s. Histolo- gisches. Biocönotisches. Commensalismus , Symbi- ose Amphipoda und Cope- poda in Ascidia 19, Arach- nidae 78, Diptera 413, Myrmecophila 194, Pseu- doneuroptera 172 — Feinde Arachnidae 79, Crustacea 34, Hemiptera 375, Lepi- doptera 479 , Pseudoneu- roptera 172 — Parasiten Arachnidae 79, Asellus30, Crustacea 19 (Gregarinae) , 25, 28, 34, Diptera 413, Lepidoptera479, Lithobius 118, Macrotoma 144, Or- thoptera 1 94, Termes 172 — Parasitismus Arachnidae 78 , Coleoptera 226 , Cru- stacea 21 , Diptera 413, Hymenoptera 345. Biologisches. Cantharis (Jugendformen) 148 — Crustacea 15 ff. — Daphnia 22 — Hymenop- tera 345 — Lepidoptera 476-480. Aufenthaltsort, Vorkom- men etc. Atypus77, Chiro- nomusl59, Coleoptera 226, Crustacea 34 , Hemiptera 375, Lithobius 118, Polyxe- nus HS, Solifugae 79, Ur- coleoptera 142, Urinsecten 141 — Beziehungen zur Pflanzenwelt, Gallen etc. Diptera 411 , Chermetidae 156, Hemiptera 375, Hy- menoptera 345 , Lepidop- tera 477 — Färbung Cole- opteraraupen 139, Limu- luseier 61, Variabiliät Le- pidoptera 480 , u. Anpas- sung Atyephyra u. Gebia 28 — Gewichtsabnahme Ei Bombyxl63, Hexapodal3S — Giftigkeit Arachnidae 79, Myriopoda 108, Spei- chel Sphaerogyna 71 — Häutung Arachnidae 77, Astacus 28, Atyephyra 27, Atypus 68, Coccidae 156, Ephemera 172 , Gnaphosa 68, Hemiptera 375, Homa- rus 28, Limulus 62, Macro- toma 143, Trichodactylus 70 — Helligkeits- u. Far- bengefühl Crustacea 19 — Klima u. Witterung Ein- fluß Hemiptera 375 , Lepi- doptera 476, 477, — Lebens- dauer Arachnidae 76,Chiro- nomus 159 — Lebensge- wohnheiten , Lebensweise etc. Arachnidae 78, Coleop- tera 226, Diptera 411, He- miptera 375 , Neuroptera 184, Orthoptera 193,Palpo- pleura (Haltung) 172, Pseu- doneuroptera 171 , Termes (technische Fertigkeiten) 171 — Lebenszähigkeit Hexapoda 138, 164, 193, Limulus (Eier) 61, Micro- gaster (Chromsäure) 152, Vanessa (Decapitation) 164 — Nahrung, Kahrungser- werb U.Nahrungsaufnahme Apis (Brod , Brutdeckel, Höschen, Futtersaft) 151, Arachnidae 77 , Bombus (Heterotrophie) 148, Botys (Embryo) 164, Coleoptera 226, Crustacea 19, Formica 149, Gamasus 88, Hemip- tera (Pflanzen) 375, Homa- rus 28, Mallophaga 158, Myrmeleon 184, Pseu- doneuroptera 171 , Scuti- gera 118, Thripidae 203 — Nest, Nestbau etc. Arach- nidae 77, Aristias 30, Cam- pono tus 151, Hymenoptera 151, 346, Leucothoe 30, Myrmeleon 184 — Phäno- logisches , Wanderungen, Züge Achorutes 165 , Co- leoptera 226 , Hemiptera 375,Hymenoptera345,Lepi- doptera 476, 477 , Neurop- tera 184 , Orthoptera 195, Pseudoneuroptera 194 — Überwinterung Arachnidae 77, Coleoptera 226 , Sym- pycna 172. Bird, J. 340, 444. Birgus 49. Birö, L. 72, 167, 206, 340, 367, 406. Birthler, Friedrich 206. Bisaltes 316. Bisaya 257. Bishop, E. B. 444. Biston 489, 531, 557, 559. Bithiasa 524. Bitoma 264. Biton 80, 112. Bittacus 184, 185, 188. Bizone 482, 514. Blaber, W. H. 444. Blabophanes 539. Blackburn, T., & Sharp 206. Blackburnia 239. Blaesoxypha 437. Blanc, Henri 8, 367. Blanchard, Fred. 206. Blandford, W. F. H. 444. Blaniulus 120. Blaps 289, 290, 552. Blapstinus 289, 290. Blaptosoma 240. Blastobasis 539. Blastophaga 350-352, 554. Blatta 133, 201. Blattidae 141, 196, 200. Blattidium 201. Blattina 200, 201. Blechrus 238, 240. Bledius 248, 249. Blenina 506, 522. Blennocampa 347, 348. Blepharida 330, 331. Blepharipeza 439. Blepharis 196. Blepharoptera 433. Blepiarda 299, 302. Bleptina 525, 526. Bleteogonus n. 382-384. Bleuse, L. 206, 444. Blissina 382. Blissus 382, 383, 547, 555. Blitophaga 257. Blochmann, F. 67, 125, 340. Blossia 112. Blosyrus 302. Blumenthätigkeit s. Biolo- gisches. Blut s. Circulationssystem. Blutelemente s. Histolo- gisches. Boarmia 488, 529-532. Boas, J. E. V. 8. Bocana 524-528. Bocchoris n. 534, 536. Boden, C. J. 444. Bohatsch, O. 444. Boiteau, P. 367. Bolboceras 271. Bolbocheta n. 439. Boletina 421. Bolitobius 249. Bolitochara 248, 249. Bolitophila421. Bolitotherus 552. Bülivar, Ignacio 167, 191. Bolyphantes 105. Bombus 2, 130,131, 135,148, 149, 163, 346, 359, 360, 364, 365, 414. Bombycidae 3, 474-477, 479, 482,486,487, 489-492,495, 497, 511, 518, 521. Bombyliidae 420, 428. Bombylius 365, 428. Bombyx2, 4, 164, 474-479, 482, 490,496,497,517,518, 520, 521, 525, 549. Bomolocha 523, 526. Bomolochidae 39. Bona 96. Bone, G. H. K. 444. Register. 567 Bonesia 331. Bonizzi, Paolo 368. Bonnaire, . . . 206. Bonnet, Ed. 191. Bonnet, Ed., & Ad. Einet 191. Bonnet, M. 444. Boopia 404. Bootes n. 99. Bopyridae 15, 25, 56, 58. Bopyrus 56. Borbas, Vinc. 368. Borborina 432. Borborus 432. Boreomysis 17, 24, 43, 44. Boreophausia 43. Borer, J. 444. Boreus 184, 187. Bormans, A. de 191, 340. Borocera474, 479, 482, 491, 518. Borre, A. Preudhomme de 116, 219, 444. Borsten s. Integumentge- bilde. Bos, Hemmo 125, 340. Bosmina 18, 23, 32, 40, 41. Bostock, F., jun. 444. Bostrichidae 288. Bostrychus 288. Bothrideres 264. Bothriothorax 415. Bothriuridae 111. Bothropolys 123. Bothi'othorax 351. Bothynoderes 299, 302. Botis 495, 536. Botryonopa 334. Bott, P. 340. Botydidae 491, 494. Botys 164, 484, 489, 533-537, 559. Bourgeois, J. 206, 207. Bourne, Gilb. C. 115. Bovallius, Carl 8. Bowditch, F. C. 207. BoAvles, G. J. 445. Braband, Ed. 445. Brachiella 39. Brachistes 354. Brachyacantha 338. Brachycampta 421. Brachycarenus 381. Brachycentrus 185. Brachyceratae 420. Braehyceropsis n. 297, 302. Brachycerus 297, 302. Brachyooelus 240. Brachycolus 397. Brachycoma 439, 440. Brachycybe 121. Braehyderes 298, 302. Brachyderinae 299. Brachydesmus 120. Brachygnathus 239, 240. Brachygrapsus 51. Brachyhelops n. 290. Brachyidium 290. Brachylobus 239, 240. Brachynema 380. Brachynemata n. 494 , 538, 539. Brachynus 240. Brachyomus 296. Brachyopa 430, 431. Brachyopinae 430. Brachypalpus 430, 431. Brachypauropus 119. Brachypelta 379. Brachypeplus 262, 263. Brachyphlebia 177. Brachypterus 262, 263. Brachyptilus n. 182. Brachypyge 113. Brachyrrhynchus 385. Braehys 550, 551. Braehysoma 516. Brachysteles 387. Brachystoma 189. Brachyta 317. Brachytarsina 441. Brachytarsus 313. Brachytemnus 302. Brachythele 93. Brachytrypes 193, 194, 200. Braehyura 15, 16. 28, 59. Braehyuris n. 269. Bracon 353, 354. Braconidae 353. Brady, W. E. 445. Bradya 37. Bradycellus 240, 242. Bradycinetus 298. Bradynotes 198. Bradyrrhoa 533. Brahmaea482, 519. Bramson, K. L. 445. Branchionycha 525. Branchiopodidae 42, 58. Branchiopodites 58. Branchiostoma 121, 122. Branchiotrema 122. Branchipus 16, 23, 42. Brandt, A. 125. Brandt, E. K. 125. Branner, J. C. 368. Brants, . . . 445. Braquehaye, Jules 207. Brassolina 497. Brauer, Friedr. 125,164,167, 191, 203, 406, 445. Braula 441. Braulina 441. Braun, M. 8. Bregmocerella n. 55. Breitenbach, W. 445. Brennus 242. Brenthidae 313. Brephos 526, 558. Breyeria 141, 180. Briada 522. Briant, T. J. 125. Bridgman, J. B., & E. A. Fitch 340. Briggs, Ch. 445. Brigbt, P. 445. Brischke, C. G. 340, 406. Brisout de Barneville, Charles 207. Brodia 179, 180. Bromius 546. Brongniart, Ch.l25, 164, 167, 191,368. Brontes 267. Brontolaemus n. 267. Brooks, W. 9, 445. Brooks, W.K.,&A. T.Bruce 60. Broscus 240. Brotis 524. Brotolomia 483. Broun, Thomas 207. Brown, R. 445. Bruce, A. T. 60, 126. Bruchidae 313. Bruchus 313-315. Brumus 337, 338. Bruner, La-wrence 192, 368, 542. Brunia 515. Brunner von Wattenwyl, C, 192. Brunst s. Fortpflanzung. Brutgeschäft s. Fortpflan- zung. Bruzelia 53. Bryaxis 255, 256. Brycea 496, 514. Bryocharis 248, 249. Bryocoris 388. Bryodema 197. Bryonomus n. 247, 249. Bryophila 487, 489, 490, 521, 522. Bryophilina 521. Bryoporus 249. Brytis 523, 525. Bubalocephalus 297. Bucchich, Greg. 192. Bucculatrix 484, 558. Buckley, W. 445. Buddeberg, .. . 207. Budde-Lund, Gust. 9. Bulaea 337, 338. Bulboneura 502. Bunaea 482, 490, 491, 519. Bunge, Alex. 9. Bupalus 414, 415, 490, 530, 532. Buprestidae 276. Buprestis 276, 277, 550, 551. Buproridae 38. Buproris 38. Burbidge, F. W. 445. Burgess, E. 126. 568 Register. Burmeister, H. 207. Butalis 477, 484, 488, 539, 559. Butheolus 110. Buthidae 110. Buthus 6, 110, 111. Butler, A. G. 445. Butterfield, E. P. P. 446. Büttikofer, J. 168. Buysson, H. de 207. Byblis 53. Bycrea 289. Byrrhidae 269. Byrrhus 269. Bythinoplectus 255. Bythinus 255, 256. Bythocaris 46. Bythoeythere 59, 60. Bythoseopus 390, 391, 554, 555. Bythotrephes 42. Byturna 526. Cabera 530. Caccodes n. 284. Caecophrissus n. 316, 317. Cacoeeia 484, 538, 558, 559. Cacostola 316, 317. Cacozelia 533. Caduca n. 522, 526. Caeciliini 175. Caecilius 174, 175. Caelenopsis 89. Caenacantha n. 425. Caenia 280. Caenochira n. 299, 302. Caenocoris 383. Caeporis 331, 332, Caesa 521. Cafius 247-249. Calamia 477, 488. Calamobius 552. Calandra 296, 298, 300, 302, 303, 307, 549, 553. Calandrinae 299. Calandrini 297, 298. Calandruccio, S. 406. Calanidae 15, 18, 37. Calanus 37. Calaphis 555. Calappidae 49. Calasymbolus 511. Calathus 238, 240. Calesia 522, 524. Caligidae 39. Oaligonus 92. Caligus 39. Calinaga 502-504, 509, 510. Callamesia n. 513. Callaonella n. 42. Callaspidia 553. Callerebia 499, 500. Callia 318, 321. Callianassa 48, 59, 60. Callianidae 17. Callibaetis 172, 176, 177. Callichroma 318. Callicilix n. 519. Callicnemis 274. Callicore 502. Callidium 315, 316, 318, 321, 551 552. Callid'ula 479, 512. Callidulidae 493, 512. Callidryas 480, 491-493, 507, 508. Calliethera 98, 99, 101. Calligenia 514. Callilanguria 336. Callimenus 194, 198. Callimome 351. Callimorpha 482, 487, 495, 516, 517. Callinectes 29. Callinemidae 198. Calliope 326. Calliopius 53. Calliphora 411, 416, 437. Calliploea 478, 497. Callipta n. n. 326. Callipterus 554, 555. Callirrhipis 279. Callispa 334. Callisphyris 318. Callisthenes 237, 238, 240. Callistriga 240. Calliteara 518. Callitettix 393. Callithea 502. Callithomia 495, 498. Callizona 502. Callochlora 557. Calloides 551. Callopis 316. Callopisma 318. Callopistria 526. Callosamia 519, 558. Callosune 490, 491, 507, 508. Callotroglops 285. Callyna 526. Callyntra 290. Calobata 416, 432, 433. Calobatina 433. Calocaris 48. Calocoris 388, 389. Calodema 277. Calodera 248-251. Calodrepa 240. Calomela 329. Calometopus 275. Calommata 94. Caloneura n. 202. Calophaena n. 248, 249. Calophasia 496, 526. Caloptenus 194, 198, 414, 415, 548, 549. Calopteron 280. Calopteryx 2, 172, 178. Caloscelis 393. Calosoma 237, 240, 242, 546. Calosomites 237. Calothysanis 531. Calpe 522. Calpira 522. Calydonis 290. Calymnia 415. Calypteratae 435. Calyptocephalus 281. Calyptomerus 258. Calyptonotus 382-384. Camaranotus 554. Cambala 121. Cambaroides 31, 47. Cambarus 28, 31, 47. Camboue, P. 446. Cambridge, O. P. 72, 446. Camedula 240. Camerano, L. 126, 446. Cameron, P. 340, 406, 446. Camia n. 299, 302. Camnula 197, 549. Campbell, F. M. 168, 446. Campilochira 326. Campodea 112,136,140,166. Campodeadae 166. Campolita 240. Camponotus 151, 346, 359. Campoporus n. 248, 249. Campsienemus 429. Camptobrochis 388, 389. Camptocera 383. Camptocercus 31, 41. Camptodes 337. Camptonotus n. 381. Camptopus 381. Camptorrhinae 299. Camptorrhinus 299, 302. Camptosomata 325. Camptotelus 383. Camptotylus 389. Campulus 552. Campylocera 435. Campylomma 388. Campylorayza 420, Campyloptera n. 181. Campylus 277. Cancer 29, 50. Cancridae 50. Candeze, E. 207. Candona 21, 31, 40. Candyba 520. Canestrini, G. 72. Canestrini, G., & A. Berlese 72. Canestrinia 85. Canidia 318. Cantacader 384. Cantharidae 549. Cantharis 148, 285, 295. _ Canthocamptus 19, 31, 37. Canthon 271. Canton, R. G. 368. Capitulum 35. Capnodes 522, 524, 526. Register. 569 Caprella 19, 52. Caprellidae 51. Caprification s. Biologisches. Capron, E. 341. Capsidae 378, 388. Capsus 389, 554. Capus, G. 72. Carabidae 237, 549. Carabitae 237. Carabites 237. Carabodes 89, 90. Carabosoma n. 237,240, 241. Carabus 163, 237-239, 241, 242, 546. Caradrina 523, 525, 526. Caradrinina 522. Caranilla n. 483, 522, 524, 526. Careelia 435. Carcinops 259-261. Carcinus 4, 19, 27, 29, 51. Cardamyla 533. Cardiastethus 387. Cardiophorus 277, 339. Cardiostichus n. 287. Carenostylus 238, 242. Caricea 436. Carididae 16, 45. Caridina 46. Caritheca 330, 331. Carlet, G. 126. Carlini, Angelo de 72, 116, 168,192,207,368,406,446. Carneades 318. Carnoy, J. B. 1. Carnus 441. Carpentier, L. 341. Carpheolus n. 316, 318. Carphoborus 551. Carpocapsa 475, 484, 538, 547. Carpocoris 379, 380. Carpophilus 262, 263, Carriere, Just. 1. Carrington, J. T. 446. Carruceio, A. 9. Carsia 530. Carter, J. "W. 446. Carterica 318. Cartodere 268. Carus, J. V. 7, 9. Caryatis 523. Caryoborus 313-315. Carystus 393. Casbia 532. Cascellius 239, 242. Casey, Thomas 207. Cassida 336, 413. Caasidemyia 435. Cassidini 336. Cassolus 271. Castalius 506. Castelli, ... 116. Castniidae 493. Castniina 511. Catabomba 429, 430. Catada 542, 525. Catagramma 478, 502-504. Cataclysta 533-536. Catamola 536. Catantops 198. Catapicephala 414, 437. Catapionus 302. Catapoecilma 506. Catascopus 242. Catastia 534. Catephia 486, 522, 523. Catephiidae 492. Cathaemia 493. Catharsius 271. Cathartus 267. Cathormiocerus 298, 302. Catilia 438. Catocala 163, 474, 476, 477, 483, 487, 490, 495, 523, 525, 526, 557, 558. Catocalidae 492. Catocha 420. Catochrysops 481, 492, 506. Catographa 530. Catonephele 502. Catopomorphus 257. Catops 257, 258. Catopsilia 476,481, 507,508. Catorama 287, 288. Catuna 502. Caulfield, F. B. 207. Caulostrophus 298, 302. Caulotrvpis 298, 308. Cauninda n. 483, 522, 527. Cautethia 511. Cautires 280. Cautomus n. 264, 265. Cavanna, G. 446. Cave-Browne, S. 446. Caviria 517. Cebrennus 80, 97. Cebriorrhipis 279. Cecidomyial37, 41 1-416, 420, 547, 554, 556. Cecidomyidae 416, 417, 419, 420. Cecidomyinae 411. Cecidotea 30. Cecrops 39. Celaena 559. Celaeno 88. Celeuthetes 299, 302. Cellobius n. 380. Cellularia 85. Celtis 503. Celyphus 432. Cementdrüse s. Integument- gebilde. Cemiostoma 484. Cenchrena 299. Cenchridobia 441. Cenoloba ii. 541. Center 433. Centrocarenus 381. Centromachus n. 114. Centronopus 289, 290, 293, 552. Centropages 37. Centroptilum 171, 172, 176, 177. Centrotoma 255. Centrotypus 392. Cephalissa 529. Cephalocteus 379. Cephalodonta 334. Cephalogonia 285. Cephaloleia 334. Cephennium 257. Cephennodes 257. Cephenomyia 440. Cepheus 89. Cephonodes 482, 511. Cephus 554. Ceraleptus 381. Cerambyx 226, 553. Cerambycidae 315, 339, 552. Ceramica 548. Cerapheles 285. Ceraphron 351, 413. Cerapterus 256. Cerapus 52. Cerataphis 395. Cerataspis 25, 44, 47. Cerathognathus 270. Ceratina 365. Ceratinella 103. Ceratinia 495-498. Ceratinopsis 79, 103. Ceratinostoma n. 432. Ceratitis 434. Ceratocampidae 519. Ceratoeephala 380. Ceratocombidae 387. Ceratocombus 387. Ceratolepis 43, 45. Ceratomia 557, 558. Ceratophora 484, 539. Ceratosolen n. 351. Cerbia 525. Cerceris 361, 554. Cerceros 280. Cercidia 106. Cercidocerus 300, 302. Cercinthus 381. Cercocytonus n. 57. Cercophonius 111. Cercopidae 393. Cercopis 391. Cercopsius 316. Cercus 262. Cereopsius 318. Ceresa 392, 554. Ceresium 316, 318. Ceria 430, 431. Cerinae 431. Ceriodaphnia 40, 41. Cermatia 124. Cermatobiidae n. 12::5. Cermatobius n. 116, 124. 570 Register. Cerocoma '295. Ceroglossus 237, 239, 242. Ceroma n. 79, 112. Cerophysa 331. Cerophyton 279. Ceroplastes 399. 547, 555. Ceropria 289, 290. Cerostoma 484, 539. Cerotoma 330, 331. Ceroxys 434, 435. Cerucfius 552, 556, Cerura 482. Cerylon 264, 265. Cethosia491, 493, 501, 504. Cetonia 133, 148, 225, 274, 275. Cetonini 274. Ceuthorrhynchidius296, 298, 302. Ceuthorrhynchini 298. Ceuthorrhynchus 296, 298, 300, 302,303,306,309-311. Chaenosternum n. 300, 302. Chaetechelyne 123. Chaetectetorus 299, 302. Chaetocnema 330, 331, 552. Chaetogaster 438. Chaetomelas 237, 241. Chaitophorus 396, 555. Chalaraspidae 45. Chalaraspis 43, 45. Chalastinus 318. Chalastra 530. Chalcididae 350. Chalciope 524, 525. Chalcis 350, 351, 415. Chalcochiton 428. Chalcodermus 302. Chalcolampra 329. Chalcolepidius 277. Chalcomyia n. 430, 431. Chalcophora 277, 551. Chalcoscirtus 98, 99. Chalcosia 513. Chalcosiidae 491-493, 496, 513. Chalcosmia 365. Chalcosoma 274. Chalepus 334, 335. Chalia 521. Chalicodoma 346, 365. Challenger 9. Chaloenus 331. Chamaesipho 36. Chambers, V. T. 9. Champion, G. C. 207. Championa 318. Chanapa 478. Chapuisia n. 313. Charadra 558. Charaeas 477, 479, 483, 547, 559. Charaeus 415. Charagia 483. Charagochilus 388. Charaxes 481, 491-493, 503, 504. Chariclea 483. Charidea 496, 513, Charideina 516. Chariptera 490. Charistena 334, 335. Charmosta 240. Charon 111. Charopus 285. Charrin, E. 446. Chatin, Joannes 126, Chauliodes 181, 190. Chauliodus 484. Chauliognathus 284, 285. Chauna 424. Cheimatobia 477, 530, 547. Cheimatophila 538. Cheiriditae 326. Cheiridium 109. Cheirispa 334, 335. Chelepteryx 482. Chelidomyia 441. Chelifer 78, 80, 109, HO. Cheliferidae 109. Cheliphlebia n. 182. Chelisia 436. Chelonethi 71, 109,112, 113. Chelonia 475, 517, 548. Chelonina 516. Chelonitis 337. Chelonobia 36. Chelonus 350, 354. Chelymorpha 336. Chemisches. Ameisensäure Bedeutung im Honig Apis 151 — Auf- nahme von Kalk , Eisen etc. in die Gewebe Gam- marus 29 — Blut Callinec- tes 29, Limulus 61, ist sauer Larven u. Puppen Hexapoda 139, Puppe Sa- turnia 164, Körperflüssig- keit melanisirt Lepidoptera 164 — Blüthenstaub Cory- lus 151 — Calciumcarbonat im Bindegewebe Tricho- dactylus 69 — Cantharidin 148 — Chitin in Leber Limulus 61 , in Seide 7 — Chlorophyll Hexapoda 139, Chloro- und Xantho- phylle Raupen Lepidoptera 138 — Chorionin Bombyx 163 — Elastisches Gewebe Eristalis 159 — Entoster- nit Limulus 61 — ■ Excre- tionsorganeAmphipoda 29, Macrotoma 142, grüne Drüse Astacus 29 — Farb- stofleAphidae 7 — Guanin grüne Drüse Astacus 29 — Glycogen Arachnidae 7, Astacus 7, Crustacea 19 — Harnsäure Fettkörper Sa- turniapuppe 164, Malpi- ghische Gefäße Trichodac- tylus 70, Chilopoda 116 — Magen, Speicheldrüse, Mal- pighische Gefäße Peripla- neta 145 — Mitteldarm- secret Hexapoda 134 — Pigment der Puppenhülle Saturnia 164 — Reduction von Osmiumsäure in den Tracheen Luciola 148 — Scuta undTergaCirripedia 7 — Secret der Beine Hexa- poda 132 — Stoffwechsel im Ei Bombyx 163, Cheraphilus 46. Cheritra 505. Chermaphis 397. Chermes 156, 396, 397, 554, 555. Chermesina 395. Chermetidae 155. Cheshire, Frank R, 126. Cheshire, Frank R., & W. Watson Cheyne 341. Chesias 530. Chevrolat, Auguste 207. Chevrolatia 256, 257. Cheylabis n. 85. Cheyletia 91. Cheyletidae 83, 91. Cheyletus 83, Cheylurus n. 91, Chilo 536. Chilocorini 337. Chilocorus 337, 338. Chilognatha 71, 119. Chilomenes 337. Chiloneurus 350, 351. Chilonidae 486. Chilopoda 71, 116, 118, 121, 124. Chilosia 429-431. Chilosinae 430. Chilton, Ch. 9. Chimabacche 538. Chimarrha 187, Chion 316, 550. Chionaspis 399, 400. Chionea 423. Chionobas 495, 496, 499, 500. Chionotopus 285. Chiracanthium 95, 96. Chiridium 109. Chirogonia n. 299, 303, Chiromyzidae 425. Chironomidae 422. Chironomus 137, 159, 411, 416, 422. Chiroscelis289. Chirotenetes 172, 176, 177. Chirothrips 204. Chirozetes 299, 303. Register. 571 Chitingebilde s. Integument- gebilde . Chittenden, D. 446. Chitty, H. 446. Chlaenius 237, 242. Chlamydopsis 260. Chlamys325, 552. Chlenias 530, 532. Chloe 140. Chloealtis 197. Chloebius 303. Chioecharis u. 248, 249. Chlorion 361. Chlorionidea n. 394. Chlorita 391. Chloromyia 425. Chloropina 433. Chloropisca 433. Chlorops413, 432, 548, 556. Chlorota 273. Chlosyne 496, 503, 504. Chnootriba 338. Choaspes n. 289, 290. Choeridium 271. Choerocampa478, 482, 487, 488, 491, 511, 512. Choleva 257, 258. Cholodkovsky, N. 126. Cholomyia 438. Cholus 296. Chondracanthidae 39. Chondracanthus 39. Chondrorrhina 275. Chondro stega 516. Choragus 313. Chorda s. Skeletsystem. Chordeumidae 120. Choregia 539. Choreutina 486. Choriolaus n. 316, 318. Choris 326. Chorista 185. Chorosoma 381. Chortophila 436. Chremolamus 290. Chrestotes 179, 180, 183. Chretien, P. 446. Christoph, H. 447. Christy, R. M. 447. Christy, R. M., &R.Meldola 447. Christy, Thomas 368. Chroantha 381. Chroaptomus n. 247, 250. Chromatomyia 435. Chromatophoren s. Histolo- gisches und Integument- gebilde. Chromomaea 294. Chrostogastria 518. Chrysauge 496, 536. Chrysididae 360. Chrysis 346. Chrvsobothris 550-552. Chrysobothrys 277. Chrysocale 496, 514. Chrysocarabus 241, 242. Chrysochlamys 430, 431. Chrysoehroa 277. Chrysochus 326. Chrysoclista 484. Chrysodema 276, 277. Chrysodina 326. Chrysogaster 430. Chrysogastra 277. Chrysogrammus n. 330, 331. Chrysolarentia 530. Chrysomela 329, 414, 550, 551. Chrysomelidae 324. Chrysomelini 329, 339. Chrysomyia 424. Chrysonotus 425. Chrysopa 145, 184, 185, 189, 549. Chrysophanus 506. Chrysopida 326. Chrysopidae 185, 189. Chrysopila 426. Chrysopini 183. Chrysops 426. Chrysostigma 240. Chrysothrix96. Chrysotoxum 430, 431. Chrysotus 429. Chthamalidae 36, 58. Chthoneis 331. Chthonius78, 109, 110. Chusaris 525. Chydorus 41, 42. Chyliza 432. Chyzer, C. 168, 207, 368. Ciaccio, G. V. 126. Cicada 133, 391-393, 554, 555. Cicadellidae 155. Cicadetta 393. Cicadidae 392. Cicadula 390, 391, 555. Cicindela 236. Cicindelidae 236, 549. Cicones 264, 265. Cicurina 104. Cidaria 476, 477, 479, 480, 483, 488, 489, 496, 530- 532. Cidnorrhinus 298, 303. Cillaeus 263. Cilicina 519. Cilissa 365. Cilix 478. Cimbex 149, 346, 546, 553, 554. Cimbus 303. Cimex 379, 380, 383, 386, 387. Cimicidae 387. Cimicodes 529. Cionini 298. Cionus 298, 303, 308. Circotettix 197. Circnlatioussystem. Androctonus 6 — Cantho- camptus 19 — Daphniidae 22 — Macrotoma 143 — Schizopoda 24. Abweichung vomTypus Bom- bus u. Cimbex 149 — Blut Chemisches Callinectes 29, Hexapoda (Larven u. Pup- pen) 139, Limulus6I, Gly- cogen Crustacea 19, Para- siten darin Asellus 30, Spectrum Decapoda 29 ; Blutkörper Anhäufung in den Antennen Sphaerothe- rium 116, Rolle bei der intracellulären Verdauung (Histolyse) Musca 159, 160 — Darm Decapoda 26 — Halteren Diptera 158 — Herz Geometridae 162, Psyllidael54, Homologie Apis 151, Ontogenetisches Atyephyra28, Phylogene- tisches Calanidae 22, Herz- schlag Embryo Botys 1 64, Mallophaga 158, Herzthä- tigkeit Larve Musca 161 — Ontogenetisches Apis 151, Gryllotalpa 146, Li- mulus 62 — Phylogeneti- sches Arthropoda 5 — Schwanzborsten Epheme- ridae 144 — Tracheenkie- men Diptera 159 — Ver- hältnis zu den Coxaldrüsen Limulus 6, zu den Muskeln Limulus u. Scorpionidae 6. Cirrhicera 318. Cirrhoedia 487, 525, 527. Cirripedia 18, 19, 32, 35, 58. Cirrochroa 491, 501. Cirrospilus 351. Cis 288. Cisarthron n. 288. Cisdygma n. 288. Cissidae 288. Cissites 295. Cistela 294. Cistelidae 294. Cisthene 495, 496, 515. Citheronia 557, 558. Citigradae 112. Cixius 554. Cladius 347. Cladocera 15, 22, 31, 40 58 Cladodes 281-283. Cladognathus 270. Clambidae 258. Clambus 258. Clamophora 330, 331. Clania521. Clarke, Wm. E. 447. Clarkson, Fred. 207, 447. Clastocnemis 275. 572 Register. Clastoptera 554. Claterna 522, 524. Clathrotermes 183, 184. Claus, C. 9. Clavellaria 347. Claviger 256. Clavigeridae 256. Clavipalpus 273. Claypole, E. W. 208, 447. Cledeobia 536. Cleippides 53. Clement, ... 208. Cleobis n. 299, 303. Cleoceris 525, 527, Cleodora 539. Cleoninae 299. Cleonus 296, 298, 299, 303. Cleonymus 351. Cleophanina 522. Cleopus 298, 303, 308. Cleora 476, 558. Cleorina n. 326. Cleosiris 512. Cleozona 318. Cleptor n. 326. Cleridae 286, Cleroclytus 318. Cleronomus 287. Clerota 275. Clerus 286, 287. Cletthara 527. Clibanarius 49, 60, 238. Clidia 522. Clifford, J. R. S. 72, 368, 447. Clinocentrus 354, 355. Clinocoris 379, 380. Clisiocampa 482, 547, 557. 559. Clitellaria 424. Clitellarina 424. Clithria 275. Clitostethus n. 338. Cloantha 478. Cloe 177. Cloeon 171, 172, 176, 177. Cloeopsis 177. Clorotocus 45. Clostera 520. Closterocera 481. Closterocerus 352. Clothilda 496, 501, Clothilla 174. Clovia 393. Clubiona 77, 95, 96, 553, 555, 559. Clypeolaria n. 326. Clyta 437. Clytanthus 318. Clytarlus316, 318. Clytellus 318. Clytia 440. Clytra 325. Clytus 315, 316, 318, 546, 550. Cnaemidophorus 485, 541. Cnaphalocroeis 534. Cnemodon 430, 431. Cnemogonus 298, 303. Cnephalocotes 103. Cnephosa 379. Cnethocampa 517. Cnockaert, G. 447. Coatlantona 502. Coccidae 78, 152, 155, 399. Coccidula 337,338. Coccinella 337, 338, 553. Coccinellidae 337, 549. Coccophagus 350, 351. Coccosterphus 392. Coccus 136, 137, 399, 400, 554, 555. Coccyx 484. Cochliopodae 489. Cochylis 484, 489, 538. Cockerell, T. D. A.208, 447. Cocon s. Biologisches. Cocytina 511. Cocytodes 523. Codiosoman. 298, 303, 308. Codonia 531. Coeculus 93. Coeliastes 298, 303. Coelidia 276. Coelinius 413. Coeliodes 298, 303, 355. Coelioxys 346. Coelocraera 260. Coelodasys 558. Coelom 8. Leibeshöhle. Coelopa 417, 432. Coementa n. 496, 515. Coenomyia 425. Coenomyidae 425. Coenonympha 476, 499, 500. Coenoptychus n. 96. Coenosarca 288. Coenoscelis 267. Coenosia 432, 436, 496. Colaenis 475, 495, 501, 504. Colaspis 326, 327. Colaspoides 327. Colasposoma 327. Colastes 355. Colbusa 523. Coleman, N. 208. Coleman, W. S. 447. Colenis 257. Coleophora 484, 486, 488, 539, 559. Coleoptera. Allgemeines (Handbücher, Nomenclatorisches, Biolo- gie etc.) 225-227, Biologie der Familien 236-339 — Anatomie, Ontogenie etc. 147, 148 — Faunistik 227- 339 — Literatur 204 - 225 — Paläontologie 339 — Schaden, Nutzen, Vertil- gungsmittel,Pflege550-553 — Systematisches 191, 236-339. Coleopteroidea 141. Colias 475, 477, 480, 4SI, 487, 489-491, 495, 507, 508. CoUacantha 107. Collapteryx 316. Collembola 141, 165. Colletes 148. Collin, Jonas 7, 9. Collix 487. Collops 285, 286. Coloberos n. 280. Colobicus 264, 265. Colobothea 318. Coloburus 176. Colon 257, 258. Colopha 554. Colophotia 281, 282. Coloptera 361. Colossendeidae 8. Colossendeis 8. Colotes 285. Colpocephalum 403, 404. Colpodiscus 239. Colpodota 248, 251. Colposia 525. Colpotus 292. Colusa n. 250. Colussa 518. Colydiidae 264. Colydiuni 264. Colyostichus n. 351. Colyphus 287. Cometes 318, 320. Commensalismus s. Biocöno- tisches. Commotria n. 496, 536. Compsa 316. Compsochilus 246, 250. Compsomyia 437. Comys 351. Conchylis 546. Conderis 280. Condylops 285. Coniatus 297. Conibius 289, 290. Conilera 55. Coniopterygidae 188. Coniopteryx 185, 188. Conocephalidae 199. Conocephalus 199. Conoecus n. 290. Conolichas 64. Conophthalmus n. 289, 290. Conopidae 432. Conopinae 432. Conops 432. Conorhinus 556. Conosia 423. Conosoma 248, 250, 255, Conotrachelus 551, 553. Constant, A. 447. Register. 573 Conurus 250. Cook, A. J. 341, 447, 542. Cooper, B. 447. Cooper, J. A. 447. Copaxa 491, 519. Copelatus 245. Copepoda 15, 16, 18, 19, 25, 31, 36, 58. Copestylum 430. Copidosoma 351. Coprini 271. Copris 271, 272. Copromyzina 432. Coptobäsis 533, 534, 536. Coptocephala 325. Coptocycla 336. Coptodactyla 272. Coptolabrus 237, 239, 241. Coptomerus 299. Coptomia 275. Coptorrhynchus 299, 303, 306. Coptosia 322. Coptosoma 379. Copulation s. Fortpflanzung. Copulationsorgane s. Geni- talorgane. Coquillett, Daniel William 406. Coraebus 276, 546, 553, 554. Coranus 386. Corcobara 483, 523, 527. Corcyra n. 536. Cordeaux, J. 448. Cordulia 171. Cordyligaster 438. Cordylurina 432. Coreidae 378, 381. Coremia 530, 532. Corethra 159, 161, 417, 423. Coreura 496, 517. Coreus 381. Corgatha 523, 527. Corigetini 297. Corigetus 297, 303, 308. Corimalia n. 303. Corimelaena 379. Corisa 390. Corisidae 378, 390. Corizomorpha 381. Corizus 381. Corma 520. Cormocephalus 121, 122. Cornicularia 103. Cornish, Thomas 9. Cornu, M. 448. Coronulidae 36, 58. Corophiidae 52. Corophium 52. Corrodentia 141. Corsa 522. Corsyra 242. Corthylus 312. Corticaria 268. Corticus 264. Cortodera 315. Corycaeidae 38. Corycaeus 38. Corycia 524. Corydalis 181. Corydalites 183. Corydaloides n. 180, 181, 190. Corylophidae 258. Corylophodes n. 259, Corylophus 259. Corvmbites 277, 278. Corynellusn. 316, 318. Corynodes 327. Coryptilum 539. Coryssomerini 298. Coryssomerus 298, 303. Corystes 51. Corysthea 327. Corystidae 51. Coscinedes n. 318. Coscinoptera 325. Cosmethis 534. Cosmia 483, 557. Cosmisoma 318. Cosmophila 525. Cosmopleurus 382. Cosmopolites n. 297, 303. Cosmopsaltria 393. Cosmopteryx 484. Cosmoscarta 393. Cosmosoma 482, 512. Cossidae 489, 492, 493, 521. Cossina 51 1. Cossoninae 300. Cossonini 298. Cossonus 298, 300, 303. Cossus 138, 483, 521,557,558. Cossyphodes 264. Costa, Achille 72, 116, 168, 192,203,208,341,368,406, 448. Coste, F. H. P. 448. Cotachena n. 536. Cotalpa 552. Cotusa 524. Cotuza 524. Coverdale, G. 448. Cowan, T. W. 341. Coxaldrüsen s. Integument- gebilde. Coxelus 264, 265. Coytiera 327. Crabro 346, 361. Crallan, G. E. 448. Crambidae 491, 494. Crambomorpha 496, 515. Crambus 484, 487, 489, 495, 496, 536, 558. Crampa 238. Crangon 16, 27, 46. Craniophora 490, 521. Craspedosoma 120. Crastia 478, 497. Cratacanthus 242. Cratocephalus 237, 238. Cratomerus 276. Cratomorphus 281. Creagris 185, 190. Cregoe, J. P. 448. Cremastochilus 275. Cremnocephalus 388. Crenis491, 502-504. Creobius 242. Creophilus 248, 254. Crepidocercus 41. Crepidodera 330, 331, 552. Crepidopterus 242. Crepidosceles n. 494, 538, 539. Crepusculares 486. Creutzburg, N. 126. Cricula 482. Crimissa 330. Criocephalus 551. Crioceris 324, 548, 552. Crioprora 431. Crioprosopos 318. Criorrhina 430, 431. Crisimusn. 237, 242. Critogaster n. 351. Croce n. 189. Crocistethus 379. Crocota 495, 517. Croesiis 553. Croissandeau, J. 208. Cronicosialina 179, 180. Cross, Elizabeth 448. Crossidius 316, 318. Crossocerus 361. Crossogaster n. 351. Crossophorus 39. Crossotarsus 312. Crunoecia 185, 187. Crustacea. Anatomie, Ontogenie, Phy- siologie, Biologie 2, 4-7, 15-30, 63 — Faunistik 31- 60 — Literatur 8-15 — Paläontologie 58-60 — Systematik 34-60, 64. Crustulina 105. Cryphalus 312. Cryphoeca 68, 104. Cryptamorpha 267. Cryptarcha 262, 263. Crypticus 552. Cryptobium 246-248, 250. Cryptoblabes 535. Cryptocephalus 325. Cryptocompsus n. 248, 250. Cryptocope 54. Cryptoderma n. n. 300, 303. Cryptogastres 354. Cryptognathus 92. Cryptohypnus 277, 278. Cryptolaemug 338. Cryptolechia 484, 497, 539. Cryptophagidae 267. Cryptophagus 231, 267, 268. 574 Register. Cryptophasa 539. Cryptophthalmus 46. Cryptops 121, 122. Cryptorhopalum 269. Cryptorrhynchinae 299. Cryptorrhynchus 148, 296, 303. Cryptosoma 49. Cryptostemma 3S7. Cryptostomata 334. Cryptotrichus 120. Cryptotympana 393. Crypturgus 312, 551, 552. Cryptus 357, 554. Cteniopus 294. Cteniza 78, 94. Ctenodecticus 199. Ctenomorpha 197. Ctenophora 423, 424. Ctenopseustis n. 536, 538. Ctenosmia 365. Ctenosta 240. Ctenucha 475, 512, Ctylindra n. 299, 303. Cucujidae 266. Cucujus 267, 552. Cucullia 415, 477, 483, 486 -488, 496, 523, 527. Cuculliina 522. Culex 159, 411, 414, 423. Culicidae 419, 420, 423. Cuma 23, 24, 43. Cumacea 16-18, 23, 43. Cuni y Martorell, M. 341 , 348, 368. Cupes 287, 551. Cupesidae 2S7. Cupipes 122. Curculio 359. Curculionidae 296. Cutis 277. Curius 316, 318. Curley, Ed. A. 341. Curö, A. 448. Curtos 281. Cuthell, Th. Geo 448. Cyamobolus 299, 303. Cyaniris 506. Cybdelis 502. Cybister 226, 245. Cybocephalus 262. Cychramina 262. Cychramus 262, 263. Cychrites 237. Cychrus 237, 242. Cyclica 326. Cyclidae n. 64. Cycloeephala 274. Cyclodes 522, 524. Cyclogaster 424. Cyclogramma 502. Cyclomaurus 297, 303. Cyclonoda 553. Cyclonotum 245. , Cyclopidae 18, 36. Cyclopides 491, 510. Cyclops 18, 19, 31-33, 36,37. Cyclophthalmini 114. Cyclophthalmoidae n. 114. Cyclophthalmus 113, 114. Cyclopodia 441. Cyclorrhapha 417, 419, 429. Cyclosa 79, 106, 107. Cyclostomi 354. Cyclotelus 427. Cyclothorax 239, 242. Cyclus 64. Cycnus 39. Cydistus n. 284. Cydnus 379, 380. Cyladinae 299. Cylas 299, 300. Cylidrus 287. Cylindromicus n. 264, 265. Cylindromorphus 276, 277. Cylindrotoma 423. Cylisticus 57. Cyllene 315, 318, 550, 551. Cyllodes 262. Cylloma 57. Cymatia 390. Cymaterus n. 318. Cymatodera 287. Cymatophora 521, 558. Cymatophoridae 489, 492, 494, 521. Cyme 515, 539. Cymindis 242. Cymodoce 55. Cymodemus 383. Cymonomus 49. Cymothoe 502. Cymothoidae 55. Cymoriza 533. Cymus 382, 383. Cynegetis 337. Cynipidae 350, 413. Cynips 350, 553. Cynomvia 435, 437. Cynortä331. Cynthia 478, 491-493, 504. Cyphini 297. Cyphogastra 277. Cyphon 280. Cypridae 21, 40, 58. Cypridiua 39. Cypridinidae 39, 58. Cypridopsis 40. Cypris22, 31, 40. Cyprogenia 264. Cvproidea 53, 54. CyrbaSO, 98, 99, 101. CjTrestis478, 491, 493, 502- 504. Cyrillus 97. Cyrnus 187. Cyrtarachne 106, 107. Cyrtaspis 198. Cvrtauehenius 78, 93, 94. Cyrtocarenum 78, 93, 94. Cyrtocephalus 94. Cyrtognathus 316. Cyrtolepus 297, 304. Cyrtoma 429. Cyrtomaja n. 50. Cyrtoneura 437. Cyrtonotus 240. Cyrtophium 52. CjTtophora 106, 107. Cyrtopogon 427, 428. Cyrtopsochus n. 175. Cyrtoscydmus 257. Cyrtosus 285, 286. Cyrtotrachelus 299. Cyrtotriplax 336. Cyrtusa 257, Cystineura 502. Cystosoma 54. Cytaea 99, 100. Cytherella 40, Cytherellidae 58. Cytheridae 40, 58. Cytherideis 40, 59, 60. Cvtheropteron 59, 60. Cvtherura 40, 59, 60. Cytilus 269. Czerniavsky, AVold. 9. Czwalina, G. 208, 341. Dactylopius 399, 547. Dactylota 484. Dactylozodes 277. Dacus 413, 432, 556. Daday, Eug. v. 9. Daereocoris 389. Dahl, Fr. 67, 72, 126. Daiphron 284. Dajus 56. Dalara n. 361. Dale, C. ^Y. 448. Dalla Torre, K, W. v. 126, 143, 406. Dalmania 432. Dalmodes 255. Damaeus 89, 90. Damalina 427. Damalis 427, 482, 514. Dama,ster 237. Dames, W. 9. Damoetas n. 99-101. Danaga n. 533, 536. Danaia 53. Danaidae 485, 493, 497. Danaina 497. Danainae 475, 491, 497. Danais 475, 477, 478. 487, 491-495, 497, 498. Danne, Comte de 448. Dannevig, G. M. 9. Daphnella 32, 40. Daphnia 22, 32, 33, 40, 41. Daphniidae 18, 22. 32, 40. Daphnis 482. Dapsilia 558. Register. 575 Daptonoura 507. Daptus 238. Darala 361, 518. Darapsa482, 511, 557. Daremma 511. Darm s. Verdauungssystem. Darna 496, 515. Dascillidae 280. Dastarcus 265, 266. Dasycerus 268. Dasychira 415, 482, 490, 496, 517, 518. Dasychiridae 491. Dasylabris n. 360. Dasyleptus n. 166. Dasyllis 428. Dasylobus 109. Dasynotus 250. Dasyphora 437. Dasyphyma 436. Dasypogon 427. Dasypogonina 427. Dasyromyia n. 439. Dasystoma 484. Dasytiscus 285, 286. Datana 482, 558. David, L. 448. Davidina 485, 509. Davis, Wm. T. 168, 368. Davison, James, 126, 406. Dawson, G. 448. Daxata 522, 527. Debis 493, 500. Debos n. 513. Decapoda 16-18, 25, 45, 59. Decarthron 255, 256. Decatoma 352. Dechomus 264. Declana 529, 530. Dectes 318. Decticidae 199. Decticus 135, 199, 549. Degeeria 415, 417, 440. Degis n. 299, 304. Deilephila 482, 486, 488-490, 512, 559. Deilinia 530. Deiopeia 482, 487, 496, 514. Dejopeina 516. Delage, Yves 10. Delahaye, J. 448. Delamotte, D. E. 368. Delavalia 37. Deichina 510. Delena 97. Delgamana n. 522, 527. DelhermdeLarcenne, ...208. Delias 491-493, 507, 508. Deliathis 318, Delorme, P. 448. Delorrliipis 103. Delphax 394. Delphyre 496. Deltaspis 318, 321. Deltocephalus 391. Deltochilum 272. Deltoidae 522. Demas490, 521. Demelius 316. Demodex 84. Demodicidae 84. Demoleus 481. Demotina 326, 327. Demotispa 334, 335. Dendrobias 318. Dendroctonus 551, 552. Dendroides 552. Dendroleon 184, 185, 190. Dendrophagus 267. Dendrophilus 259-261. Dendroxena 257. Dendryphantes 98, 99. Depressaria 484, 485, 539, 557. Deracanthus 304. Deragena 498. Dercas 507. Derelomus 298. Dereodus 304. Dericorys 198. Dermacentor 91. Dermaleichug 86. Dermanyssus 78, 88, 89. Dermaptera 141, 196. Dermatodes 299, 304. Dermatophilidae 84. Dermestes 269. Dermestidae 269. Derobrochus 183. Deromecus 278. Derostenus 351, 352. Derrhis n. 490, 515. Derus 238. DesbrochersdesLoges,...208. Desicasta275. Desmia 534, 536. Desmiphora 319. Desmometopa 414. Destefani-Perez, T. 341. Deto 57. Deudonx491, 505, 506. Devanica 513. Devara496, 515. Dewitz, H. 126, 168, 448. Dewitz, J. 10, 126. Dexagia 299. Dexamine 53. Dexia415, 417, 438. Dexilla 438. Deximorpha 438. Dexina 438. Dexiocerella n. 52. Dexiosoma 438. Dexipeus n. 300, 304. Deyrolle, E. 368. Diabasis 426. Diabrotica 330, 547, 552. Diachlorus 426. Diachromus 238. Diacrisia 516. Diadema 36, 491, 494, 503, 504. Diaea 87. Dialephtis 496. Diallus 319. Dialyneura 427. Dialyta 436. Diamesa 422. Diamorus 352. Diana 502. Dianous 250. Dianthoecia 415, 477, 488, 496, 525, 527. Diaperis 552. Diaphanes281, 282. Diaphania 438. Diaphanoptera n. 182. Diaphanosoma 40. Diapheromera 549. Diaphonia 276. Diaphorocera 304. Diaphorus 429. Diaprepes 299, 305. Diaprysius 257. Diaptomus 19, 38. Dias 37, 38. Diasemia 534, 535. Diaspis 400. Diastylidae 43. Diastylis 43. Diatassa 299, 304. Diathetes 300, 304. Diathryptus n. 299, 304. Diaugia 438. Dibolia 330, 331. Dicentrius 256. Dicerca 550-552. Diceroderes 289. Dichelestiidae 39. Dichelestium 39. Dichelia 558. Dichelonycha 551, 552. Dichelotarsus 284. Dichirotrichus 238, 242. Dichonia 483, 525. Dichorragia 503. Dichorrhinus 298. Dichotychius n. 304. Dichrochile 242. Dichromia 483, 523, 524, 527. Dichrooscytus 389. Dichrorampha 538. Dichrosoma 275. Dicranodromia 49. Dicranolasma 79, 108. Dieranomyia 423. Dicranoneura 390, 391. Dicranthus 304. Dicranura 477. Dictyna 79, 80, 95. Dictynidae 93, 95. Dictyocicada 401. Dictyoneural40,141,180,181, 202, 203. Dictyonota 384. 576 Register. Dictyophara 394. Dicj'mbium 103. Didasvs 512. Didea 429, 430. Didonis 502. Didymophlebs n. 179, 182. Dieconeura n. 183. Diedrocephala 554. Dierna 522. 524. Diestica 290. Diestota 248, 250. Dieuches 382, 383. Digenethele 275. Dihammophora 319. Diliolophus n. 316, 319. Dilipa 502. Dillon,...448. Biloba 483, 490, 521. Dilobidae n. 490, 521. Dilophus 547, 548. Diludia511. Dimeris 356. Dimmock, Anna Kath. 208, 36S, 448, 542. Dimmock, George 208, 449, 542. Dimorphismus s. Polymor- phismus. Dimorphomyla n. 440. Dimorphopterus 383. Dimorphus 86. Dinarda 246. Dindymus 383. Dinera 438. Dineria 290. Dineura 348. Dinocampes 355. Dinumma 522, 523. Diochus 247, 248, 250. Dioelides 316. Dioctes 242. Diodesma 264. Dioedes 337. Dioedus 289. Diogenes 49. Diomea 524, 525. Diomia n. 299, 304. Diomus 338, 339. Dione495, 501, 519. Dionj'chopodes n. 114. Diopethes 290. Diopsina 522. Diopsis 432. Dioptidae 496, 514. Dioptis496, 514, 515. Dioristus 316. Dioryctria 533. Dioxys 346, 364. Dipeltis n. 64. Diphtera 490, 521. Diphyllocis n. 288. Diplagia 264. Biplax 178. Diplectrona 187. Diplocentra 432. Diplocephalus 103. Diplocladius n. 287. Diploconus 277. Diplopoda 118, 119, 124. Diplo8is412, 420, 421,556. Diplotaxis 273. Dipoena 105. Diptera. Allgemeine Morphologie, Histologie, Biologie, Ju- gendformen etc. 410-417 — Anatomie, Ontogenie etc. 158-162 — Faunistik 417-442 — Literatur 405- 410 — Paläontologie 442 — Schaden, Nutzen, Ver- tilgungsmittel, Pflege 556 — Systematik 419-442. Dipteromimus 176. Diptychophora 534-536. Diptychus 48. Diraphia 554. Dircaea 294. Dircenna 495, 496, 498. Dirphia 496, 518, 519. Dirrhagus 279. Discoderus 242. Discodon 284. Discophlebia 520. Discopoma 88, 90. Discordia n. 527. Discothera 196. Disenochus 239. Dismodicus 103. Dismorphia 507. Disonycha 330, 331. Dissoteira 197. Distant,W. L.368, 449, 542. Distenia 319. Distretus 289, 291. Ditaxis 514. Ditoma 264, 265. Ditomus 238. Ditomotarsus 379, 380. Ditoneces 280. Docophorus 401, 402. Dodaclesn. 281, 282. Döderlein, L. 72, 116. Dohrn, C. A. 168, 208. Dokhtouroff, Wlad. 208. Dolba511. Dolerus 347, 348, 553. Doleschallia 438, J491, 494, 502-504. Dolicaon 248, 250. Dolichemus n. n. 327. Dolichopoda 199. Dolichopodidae 429. Dolichopus 420, 429. Dolichosticha 534. Dolichotelus n. 300, 304. DoliosjTphus 430. Doli, .". . 449. Dolomedes 77, 102. Dolometis 327. Dolopius 278. Dolotarsus 294. Domene 251. Dönacia 324. Donacochara 103. Donckier de Donceel, H. 208. Donovan, C. 208. Donovan, C, jun. 449. Donus 297. Doracis 514. Doratopteryx 513. Dorcadion 316, 319. Dorcaschema 316, 550. Dorcasta 319. Dorceus 95. Dorippe 49. Dorippidae 49. Doritis 485, 509. Doropygus 38. Doros 430, 431. Doryctes 354, 355, Doryderes 379. Doryida 331. Doryphora 547, 548, 553. Dor}i;omus 551. Dosen 481. Doththa 533. Dotter s. Ontogenetisches. Douglas, J. W.208, 368,449. Doxosteres 541. Dragana 525. Drabescus 390. Drapetes 279. Drapetisca 105. Drassidae 93, 95. Drassus 76, 77, 96. Drasterius 277, 278. Drepana 162, 482, 519, 558. Drepanicus 185. Drepanodes 558. Drepanopteryx 185, 188. Drepanulidae 482, 487, 489, 492, 493, 519. Drepanulina 519. Drilini 283. Drilolampadius 282. Drilus 283, 546. Dromaeolus 279. Dromia 19, 25, 28, 49. Dromiidae 49. Dromius 237. Drosophila 432, 433, 556. Drosophilina 433, Druce, H. 449. Druitt, A. 449. Druryia 509. Drüsen s. die einzelnen Or- gansysteme. Drüsennerven Arthropoda 2. Drusilla 248, 250. Drycothea 319. Dryinus353, 361. Drymea 436. Drymiarcha n. 536. Drymonia 520. Kegister. 577 Drymus 383. Drvobius 550. Dryobota 483. Dryocetes 312, 551, 552. Dryomyza 433. Dryomyzina 433. Dryopais n. 304. Drvophthorini 298. Dryophthorus 298, 300, 304. Dryops 269. Dryptelytra n. 282. Dryxo 432. Duda, Lad. 368. Duges, Alf. 72, 369. Duges, E. 208. Dularius 550. Dulichia 52. Dulichiidae 52. Dimdubia 393. Dunira n. 522, 527. Du Plessis-Gouret, G. 10. Durdara 527. Düring, Chas. A. A. 449. Duronia 197. Durv, Charles 209. Duv'ivier, Ant. 209. Duzee, E. P. van 449. Dybowski, B. 10. Dyctiopterus 280. Dymasius 319. Dynamine 502, 504. Dynastini 274. Dysagrion 183. Dysaletria 429. Dysauxes 513. Dyscritus 180. Dysdera 80, 94. Dysderidae 94. Dysgena 289, 291. Dysgonia 483, 522, 524, 527. Dysgoniidae 492. Dysmachus 428. Dysopirrhinus 299. Dyspersa 521. Dysphaga 316, 319, 550. Dystaxia 276. Dystropicus n. 299, 304. Dytiscidae 245. Dytiscus2, 132,135,226,245. Dziedzicki, H. 406. Eacles4S2, 558. Eagris491, 510. Earias 514. Earinus 355. Eastlake, F. W. 449. Eaton, A. E. 168, 449. Ebaeus 285, 286. Ebaeimorphus 285. Ebalia 49. Ebenia 438. Ebonius n. 260. Ebrard, S. 449. Ebulea 534, 535. Zool. JahresbericM. 1885. II. Eburia316, 319. Eccoptomera 433. Ecdytolopha 557. Ecdyurus 173, 176. Echana 523. Echemus 96. Echenopa 392. Echiaster 248, 250. Echinocoleus n. 258. Echinomyia 415, 417, 439, 440. Echinoplax n. 5U. Echinosoma 196, 415. Echtrogaleus 39. Ecplectica n. 365. Ectatoma 359. Ectatorrhinus 304. Ectatotychius 301. Ectemnorrhinus 304. Ecteneolus n. 316, 319. Ectenessa n. 316, 319, 320. Ectima 504. Ectinosoma 37. Ectobia 196. Ectomicrus n. 265, 266. Ectrychotes 386. Edaphus 248, 249, 251. Edema 482. Edgell, D. C. 449. Edocranes n. n. 256. Edrionotus n. 360. Edriophthalmata 16, 18. Edusa 327. Edusia n. n. 327. Edwards, Henry 449. Edwards, J. 369. Edwards, W. H. 450. Edwardsia 512. Egaenus 109. Egelesta 523. Eggisops 437. Egnasia 522, 527, 528. Ei s. Genitalorgane u. Onto- genetisches. Eiablage s. Fortpflanzung. Eidoreus n. 336. Eingeweidenerv s. Nerven- system. Eiratus 304. Eisenach, H. 369, 450. Eisothistos n. 30, 54. Elachiptera 413, 417. Elachista 538, 539. Elachistus 352. Elaeodes289, 291. Elaphidion 315, 316, 550. Elaphocera 273. Elaphomyia 435. Elaphropeza 429. Elaphrus 238. Elaptus 554. Elasmonotus 48. Elasmostethus 379. Elasmus 352. Elater 277, 278, 548, 552. Elateridae 277, 339. Elaterini 277. Elatticus n. 300, 304 . Elcana 183, 184. Electrische Erscheinungen u. Organe. Abwerfen der Scheeren Homarus 28. Eleothinus 319. Elipsocua 174. Elisama201. Elisha, Geo. 450. EUampus 346. Ellema495, 511, 558. Elleschus 304. Elliot, A. 450. Ellis, John W. 209, 450. Ellison, S. T. 450. Ellopk531. Elodina 507. Elstowe, G. O. 450. Eluma 57. Elwes, H. J. 450. Elymnias 493, 500. Elymniidae 493. Elymniina 492, 497, 500. Elytrodon 298. Elytrogona 336. Elytroleptus 316, 319. Emanthia 393. Emathea 330. Embaphion 289. Embia 172, 173, 175, 176. Embidae 141, 196. Embidina 183. Embidinae 144. Embiidae 172, 173, 175. Emblethis 383. Embrocerus 285. Embryonalentwickelung s. Ontogenetisches. Emerson, . . . 406. Emerton, J. H. 72. Emery, C. 126. Empaeotes 304, 308. Empheriini 175. Emphysomera 427, 428. Emphytus 347, 553. Empidae 429. Empis 429. Emplenota 251. Empoa 550. Empodiata420. Empusa 196. Emydia 514, 535. Emydica n. 299, 304. Emydium 83. Encymon 337. Encyrtus 352. Endagria 521. Endomychidae 337. Endophloeus 264-266. Endromis 477, 482. Endropia 483, 557, 558. Endustomus 289, 291. 37 578 Rearister. Engel, E. 209, 406. Enicmus 26S. EniconjTtn. 278. ^ Enicoptera 432. Enipeus 327. Enneamera 331. Ennearthron 288. Ennodius n. n. 327. Ennomos 481, 496, 530, 582. Ennychia 487, 527. Enock, Fred. 72, 341. Enodia 361, 363. Enoicyla 187. Enome 517. Enoplognatha 105. Enoplops 381. Ensina 434. Entelecara 103. Enteropsidae n. 36. Enteropsis n. 36. Entomobrya 165, 166. Entomogramma 524, 529. Entomopteryx 530. Entomostraca 15, 64. Entoniscidae 15. Entwickelung s. Ontogeneti- sches. Entz, Geza 72. Eojulus n. 125. Eolycosa n. 115. Eopenthes n. 277, 278. Eoscorpionini 114. Eoscorpius 114. Epacromia 197. Epalxiphora 538. Epatolmis 516. Epeira 68, 76, 77, 79, 80, 106-108, 555. Epeiridae 93, 106. Epeirinae 106. Epeiroides n. 107. Epeoloides 364. Epeolus 365. Epeorus 172, 176. Epeus 99. Ephemera 171, 172, 176, 181. Ephemeridae 141, 171-173, 176, 177, 179, 180, 183. Ephemerites 179. Ephestia 475, 476, 484, 488, 533, 535, 547, 559. Ephialtes 554. Ephialtias 496, 514, 515. Ephippiger 194. Ephippigera 193, 199. Ephippigeridae 196, 199. Ephippiphora 484, 557. Ephippium 425. Ephippus 99, 100. Ephydra 432. Ephydrina433. Ephyra 128, 139, 558. Ephyrina n. 46. Epibates 428. Epicaerus 548. Epicauta 295. Epichnopteryx 489, 520. Epicoma 518. Epicopeia 514. Epicrius 88, 89. Epidermis s. Integumentge- bilde. Epierus 259, 260. Epilachna 337, 338. Epilais 514. Epilaris 299. Epimecis 529. Epimerja 53. Epinephele 480, 499, 500. Epione 531, 532. Epipasehiadae 494. Epiphile 502, 504. Epiphorbas 481. Epirrita 557. Episalus 185. Episcapha 336. Epischnia 487, 534, 535. Epischura 38. Episena 527. Episinus 105. Episomus 299. Episparis 522, 524. Epistenia 352. Episus 297, 304. Epitactus 348. Epithelien s. Histologisches. Epithomia 495. Epitragus 289, 290. Epitrix330, 331. Eppelsheim, E. 209. Epuraea 262, 263. Erana 319. Erannis 531. Erasmia 99, 513. Erastria 483, 487, 523, 527, 547. Erastriina 522. Erax 427, 428. Erbessa 496, 515. Ercheia 523, 527. Erchomus 248, 251. Erebaces 299, 304. Erebia 480, 487, 490, 495, 496, 499, 500. Erebidae 492. Erebina 522. Eremaeus 89, 90. Eremiaphila 196. Eremninae 299. Eremnini 297. Eremobia 193, 197, 487. Eremocoris 383. Eremotes 298, 304. Eresia 503. Eresidae 95. Eressa 513. Eresus 77, 95. Eretmotes 259, 260. Eretria 535. Ergane 98-101. Ergasilidae 38. Ergasilus 38. Ergasticus 50. Ergates 549, 551, 553. Ergias n. 299, 304. Ergolis 481, 502. Ericerus 313. Erichthonius 52. Ericulus n. 98, 99, 101. Erigone 70, 103. Erigonoplus 103. Eriocampa 348. Eriocera 423. Eriocnemis 271. Eriogaster 477. Eriopeltis 399, 400. Eriopodina 522. Eriopterina 423. Eriopus 483. Eriosoma 554, 555. Eriozona 430. Eriphia 50. Eriphiidae 50. Erirrhinae 299. Erirrhinus 311. Eris 98, 99. Eristalinae 430. Eristalis 4, 430. Eristalomyia 431. Ernobius 551. Ernoporus 312. Ernst, A. 450. Erodisous 304. Eroessa 495, 507. Eromene 534, 537. Eronia 480, 491, 507. Eros 551. Erosia 532. Erotomanes 533. Erotylartbris 265, 266. Erotylidae 336. ErschofF, N. 450. Erucius 197. Erycinidae 487, 492. Erycinina 505. Ervmneus 304. Eryon 59, 60. Eryoneicus 48. Eryonidae 59. Erystus n. 332. Erythraeidae 92. Erythraeus 92. Erythrops 36, 43, 44. Eryxia 327. Esamus 311. Esarcus 264. Esper 529. Estheria 23, 42, 58, 438. Esther iella 58. Estheriidae 42. Esthesopus 278. Esthlogena 319. Estigmene 516, 517. Estola 319. Etiella 535. Reffister. 579 Etoblattina201. Euacanthus 548. Euagra 496, 514, 515. Euaresta 434. Euatya 46. Eubadizon 355. Eubaphe 496, 515. Eubelum n. 57. Eubolia 532. Eubrychius 304. Eubyja 530. Eucaenus n. 182. Eucanthus 39. Eucarabus 241. Eucarphia 488, 534, 535. Eucaterva 483. Eucephala417, 419. Eucera 346. Euceratomyia 430, 431. Eucestia 530. Euchaeta 37, ;:8. Euchaetes 495, 496, 517. Euchaetomera 44. Eucharassus n. 316, 319. Eucharitolus n. 316, 319. Eucheira 507. Euchelia 482, 514. Euchenopa 554, 555. Euchlaena 531. Euchromia 484. Euclidiidae 492. Eucnemini 279. Eucnemis 279. Euconnus 257. Eucopia 24, 43, 45. Eucopiidae 43, 45. Eucorynus 316. Eucta 106. Euctenia n. 491, 513. Euctenodes 441. Eucyane 496, 517. Eucycla 330, 332. Eucyrtus291, 415. Eudalimia 531. Eudamus 557. Eudectus 251. Eudela n. 299, 304. Eudelia 496, 519. Eudera 251. Euderces 319, 551. Eudmeta 425. Eudolia n. 332. Eudorea 477, 487. Eudorella 43. Eudryas 512. Eudule 496, 514, 515. Eudyasmusn. 299, 304. Eueides495, 496,501. Eugaster 193, 194, 199. Eiigeniomyia 430. Eugereon 139, ISO, 181,202, 401. Euglenes 294. Eugnamptus 299, 305. Eugnomus 305. Eugonia 476, 477, 489, 557, 558. Eugoniopus n. 262, 263. Eugonius 337. Eulachus 265, 266. Eulampra 327. Eulechria 539. Eulissus 255. Eulophus 413. Eumacaria 484. Eumelea 531. Eumenes 346, 363, 364. Eumerus 430, 431. Eumesiina 505. Eumeta 520, 521. Eumicrus 257. Eumolpini 326. Eumimida 48. Eumycterus 298, 305. Eumyidae 419. Eunapius 198. Eunephrops n. 47. Eunica 502, 504. Euophrys 98, 99. Euops 299. Eupachys 237. Eupagurus 49. Eupalamus 428. Eupales n. n. 327. Euparyphus 424. Eupelix 390. Eupelmus 350,352,413, 553, 554. Eupeodes 430. Euperia 483, 495, 527. Euperilampus 353. Eupezus 289, 291. Euphaedra 478, 480, 502. Euphalepsus 255, 256. Euphanessa 530. Euphania 185. Euphasia 487. Eupbausia 15, 16, 24,25,43- 45. Euphausiidae 16, 17, 25, 43, 44. Euphiloscia 57. Euphoria 275. Euphranta 434. Euphya n. 433, 435. Eupithecia415, 477, 480, 484, 487-489,529,531,532,547, 558. Euplectroscelis 330, 332. Euplectrus 350, 352. Euplectua 255. Euploea 478, 479, 491-494, 497, 498. Euploeinae 492. Eupoda 324. Eupodidae 83, 91. Eupoecilia 475, 538. Eupogonius 316, 319, 551. Euprepiidae 490. Euprepoenemis 198. Euproctis 517. Eupromera 316, 319. Euproops 64. Euproserpinus 511. Eupsalis 550. Eupsophus 289,291. Eupterote 482, 518. Eupteryx391. Euptoieta 496, 502. Euraspis 327. Eurema 507. Eureum 403. Eurhipiina 522. Eurigaster 440. Euripus 502. Europhilus 238. Europs 267. Eurostus 287. Eurrhyncliinae 299. Eurrhynchus 299. Eurrhypara 488. Eurrhyparodes 533-535. Euryades 509. Euryattus 99. Eurybata 432. Eurycallinvis n. 316, 319. Eurycarabus 241. Eurycephalus 319. Eurycera n. 421. Eurycercus 31, 41. Eurycope 56. Eurycreon 475,495, 533, 536, 559. Eurycus 509. Eurydema 379-381. Eurydice 530. Eurygaster 379, 380. Eurylomia 496, 515. Eurymene 531, 532. Eurymetopon 291. Eurymyia 430. Eurynassa 316. Enryomia274, 275. Euryopa 287. Euryopis 105, 106. Eurypauropus 119. Eurypelta n. n. 327. Euryphene 502. Eurypodius 50. Euryproctus 357. Euryptera 316, 319. Eurysarcus n. n. 327. Euryscopa 325. Eurysia n. 299, 305. Eurysoma 239, 242. Eurysthea316, 319. Eurysthenes n. n. 327. Eurystodes 287. Eurytela491, 502-504. Eurytoma 346,350, 352, 413, 548, 554. Eurytus 327. Eusarca 529. Eusarcoris 379, 380. Euscaphurus n. 280. 37* 580 Register. Euscorpionidae 1 14. Euscorpius 79, 111. Eusemia478, 479, 491, 512. Eusirus 53. Eusomidius n. 305. Eusomus 298, 305. Eustemmus 257. Eustroma 316. Euteleutan. 316, 319. Eutelocarabus 241. Eutera 438. Euthalia 502, 504. Euthorax 249. Euthore 178. Euthvcodes n. 299, 305. Euthvcus n. 299, 305. Euthyrrinus 299. Eutrapela 557. Eutresis 495, 496, 498. Eutrichillus n. 316, 319. Eutrichina 518. Euura 347, 348. Euxanthe 502, 504. Euxema n. 334, 335. Euxesta 434. Euxestus 336. Euzophera 484, 533, 535, 536. Evadne 32, 42. Evaniidae 349. Evans, John D. 209. Evasa 425. Evenus 99. Everts, Ed. 209. Evippa 102. Ewing, A. L. 10. Exaeretia 485. Excretion s. Physiologisches. Excretiousorgane. Amphipoda 29 — Hala- rachne 69 — Macrotoma 142 — Trichodactylus 70. Antennendrüse Astacus 29, Limulus 7, Glycogen da- rin Crustacea 19, = K-opf- nere Crustacea 18, Ontoeg- netisehes Atyephyra 28 — Ausführungsgänge der Ge- nitalorgane Arthropoda 7 — Coxaldrüsen Arachnidae u. Mantis 68, Limulus 7, Ontogenetisches Limulus 62 — Malpighische Gefäße Geometridae 162, Mallo- phaga 158, Psyllidae 154, Chemisches Periplaneta 145, Einmündung Gryllo- talpa 133, Gehalt an Harn- säure Chilopoda 116, On- togenetisches Apis 150, Phylogenetisches Arthro- poda 5, Zell-u. Kernthei- lung Arthropoda 2 — Niere Ontogenetisches Cyclops 20, 21 — Phylogenetisches x\rthropoda 5 — Segmen- talorgane Cilien Peripatus 65, Ontogenetisches 66. Exedrium 511. Exerestus 291. Exocentrus 315. Exochomus 337, 338. Exocho Stoma 425. Exophthalmus 299, 305. Exoprosopa 428. Exorista 355, 415, 417, 435, 439, 440, 556. Exothecus 355. Extremitäten. Decapoda (Metazoea) 28 — Planocephalus 141 — Tri- chodactylus 69. — Abdomi- nalfüße Apisembryo 151, Lagoa 475, Phylogeneti- sches Hexapoda 140 — Ab- ■werfen Decapoda 28 — Ac- cessorische Füße (5 Sphae- rotherium 115 — Antenne = postorale Gliedmaße Apus 23 — Coxaldrüsen Arachnidae u. Mantis 68, Limulus 7 , 62 — Feder- büsche Carpocapsa 475 — Flügel: Embidinae 144, Palaeodictj^optera 141, Aderverlauf Diptera 15S, Lepidoptera 475 , Farbe Lepidoptera 475, F.-De- cken Stridulationsapparate Cryptorrhynchus 148, Mus- culatur Aspidiotus 155, Hexapoda 133, (Hist.) 66, OntogenetischesHexapoda 133 , Phylogenetisches Hexapoda 140, Tonappa- rat Thecophora 476, Ur- sache der Erhärtung der Vorderflügel Urcoleoptera 142 — Function der Beine Canthocamptus 19, Embi- dinae 144,Tetrophthalmu3 157, derPleopodenanhänge Siriella 24 , der Bürste an der Vordertibia Catocala 163 — Greifhand Gamma- rus 29 — Hafthaare Bau Coleoptera 132 — Halteren Diptera 158 — Innervation des 3. Fußpaares ^ Can- thocamptus 19, Ganglien der Maxillipedien Phyllo- poda 23 — Klettern Ver- halten dabei Hexapoda 132 — Morphologisches Cru- stacea 15-18 — Metamor- phose Verhalten dabei As- pidiotus 155, Coccidael56, Neubildung Musca 161 — Musculatur Halarachne 69, Histologisches Dytis- cus 66 , Ontogenetisches Gryllotalpa 146 — Onto- genetisches Atyephyra 28, Cyclops 20, 21, Limulus 61, 62, Peripatus 66, Phyl- loxera 157 , Trichodacty- lus 70 — Phylogenetisches Arthropoda 5 — Sexuelle Charactere Serolis 30, An- hang an der Vordertibia Catocala 163 — Sinnesor- gane Halarachne 69 , Bor- stenMacrotoma 143, Chor- dotonalorgane Arachnidae 68 , Geruchsorgane Hexa- poda 131 , Gehörorgane Araneidae 68, Tastorgane Araueidae 68 , Serolis 30, vorstülpbares S. Peripatus 65 — Sohle Locustidae 132 — Verlust durch Ver- schmelzung Chilognatha 71. Eylais 92. Fabellovena n. 541 . Fahre, J. H. 126, 341. Fabricia 438-440. Fairmaire, Leon 72, 209, 369. Falagria 246-248, 251, 254. Falciger n. 84-87. Fallou, J. 210, 450. Fanshawe, Lyonell 210. Farbenwechsel s. Biologi- sches. Färbung s. Biologisches u. Integumentgebilde . Farren, \V. 451. Fauconnet, L. 210. Faunistisches. Aptera (Thysanura) 165 — Arachnidae 79-115 — Co- leoptera 227-339 — Crusta- cea 18, 31-60 — Diptera 417-442 — Hemiptera 376- 400 — Hymenoptera 346- 367 — Lepidoptera 485- 541 — Mallophaga 401- 405 — Myriopoda 118-125 — Neuroptera 185-191 — Orthoptera 195-203— Pan- topoda 7 — Poecilopoda 64 — Pseudoneuroptera 173-184 — Trilobitae 64. Faust, Johannes 210. Fauvel, Albert 210, 369. Faiivelle, ... 72. Faxon, Walter 10. Fecundation s. Fortpflan- zung. Feiler, Fr. von 116. Feinde s. Biocönotisches. Feniseca 495. Fentonia 520. Reffister. 581 Fenusa 348. Feria 438. Fernald, C. H. 451. Feronia 132, 239, 243, 441. Ferrari, P. M. 369. Fettkörper s. Histologische.?. Ficalbi, E. 451. Fidia 327. Fidicina 393. Fidonia 162, 476, 484, 529, 530, 532. Fidonidae 493. Filhol, H. 10. Filistata 94. Filistatidae 94. Finot, Ad. 191. Finotia 194, 198. Firth, J. 451. Fischer, P. 10. Fischer, Ph. 451. Fischer, Sigismund 10. Fischeria 196. Fitch, E. A. 341, 451. Flavinia 496, 497, 514, 515. Fleischer, Anton 210. Fletcher, J. 210, 451. Fletcher, J. E. 168. Fletcher, W. H. B. 451. Floria 394. Flügel s. Extremitäten. Flug s. Locomotion FoeiUa 524. Focillidae 492. Focillina 522. Focke, W. O. 451. Fodina 523, 524. Fodinoidea 491, 523, 527. Foenus 346, 349. Fokker, A. J. F. 369. Fontaria 120.; Forbes, H. O. 72, 451. Forbes, S. A. 341, 369, 451, 542 Forel,'F. A. 10, 126. Forficula 2, 195, 196. Forficulidae 196. Formiana n. 496, 515. Formica 131, 148, 149, 151, 152, 359, 360, 364. Formicaleo 184, 185, 190. Formicidae 359. Formicina 105. Formicoxenus 360. Formosia 438. Fornax 279. Förster, A., &V.v. Röder406. Fortpflanzung. Arachnidae 76, 77 — Aty- ephyra 27 — Homarus 28 — Hymenoptera 151, 152. BefruchtungCuma 24, Psyl- lidae 155, Sphaerogyna 71, Trichodactylus 70 — Co- pulation Boreus 184, Psyl- lidae 155 — Brutpflege A- rachnidae 77 — Eiablage Arachnidae 77, Chermeti- dae 156, Chironomus 159, Coleoptera 226 , Diptera 416, Hemiptera 375, Lepi- doptera 479 , Limulus 61, Pseudoneuroptera 171, Tri- chodactylus 70 — Entsteh- ung der Geschlechter A- pidae 346 — Flugrichtung während der Begattung Diptera 416 — Geburt Sphaerogyna 71 — Genera- tionen Anzahl Hemiptera 375, Lepidoptera 476, Neu- roptera 184 — Hybridisi- rung Lepidoptera 479 — Parthenogenesis Apidae 346, Diptera 416, Hemip- tera 375, Lepidoptera 479, Musca 150 — Sexuelle Er- scheinungen Lepidoptera 479, Neuroptera 184, Pseu- doneuroptera 172 — Vivi- parität Cloeon 172, Tri- chodactylus 71 , Wirkung von Pyrethrumöl auf vivi- pare Muscidae 133 — Zeit der F. Cuma 23, Telphusa 28. Fossores 361. Fowler, W. W. 211,341, 451. Fox, N. P. 452. Franchet, Jean 211. Francois, Ph. 452. Freeman, F. T. 452. Freer, R. 452. French, G. H. 211, 452. Frenzel, Joh. 10, 126. Frey, H. 452. Freyana 86. Fricken, Wilhelm von 211. Friese, H. 342. Fristedt, Konr. 10. Frivaldszky, Janos 211, 452. Frohawk, F. W. 342, 452. Fromont ,...,& Ed. de Se- lys-Longchamps 108. Frontina 105. Fucellia 432. Fühler s. Stamm. Fulgora 393, 401. Fulgoridae 378, 393. Fulgorina 142, 201, 401. Furchung s. Ontogeneti- sches. Fyles, F. W. 452. €}., D. 452. Gabrisa 537. Gadeau de Kerville , Henri 8, 10, 72, 116, 342, 369, 406, 452. Gadessa n. 536. Gaeana 393. Gaffrou, E. 65. Galacantha 48. Galathea 48. Galatheidae 48. Galathodes 48. Galathopsis n. 48. Galeatus 385. Galeodes 112. Galeodidae 112. Galerita 243. Galeruca 330, 332, 550, 553. Galer ucella 330, 332. Galerucini 330. Gallen s. Biologisches. Galleria 163, 475. Galleriidae 484, 486. Galler omorpha 523. Gamasidae 83, 88, 545. Gamasomorpha 94. Gamasus 69, 78, 88, 89. Gammaracanthus 31. Gammarella 53. Gammaridae 52. Gammarus2, 18,19, 29, 31, 53. Gammatoba 498. Gampsonychidae n. 59. Gampsonyx 59. Ganae n. 300, 305. Ganesa n. 99, 101. Ganglbauer, Ludwig 211. Ganoris 508. Ganosoma n. 352. Gardner, Edmund 211, 254. Garman, H. 369, 542. Garypus 109, HO. Gasteracantha n. 106-108. Gasteruption 349. Gastrocercus 299. Gastrodes 383. Gastrolina 329. Gastropacha 415, 518, 520, 557, 558. Gastropius n. 327. Gastrosaceus 44. Gastrosphaeria 361. Gastrula s. Ontogenetisches. Gauckler, H. 452. Gaurodytes 245. Gaurotes 315, 320. Gebia 28, 48. Geburt s. Fortpflanzung. Geddes, G. 452. Gedeon291. Gefäßsystem s. Circulations- system. Gegenes 491, 510. Gehäuse s. Biologisches. Gehin, J.B.,&...Haury211. Gehirn s. Nervensystem. Gehörorgane S.Sinnesorgane. Geinitz, F. E. 168, 192. Gelasimus 51. Gelechia 477, 485, 486, 488, 539, 557, 559. 582 Register. Gelonia n. 532. Gempylodes 205. Genentomum n. 182. Generationswechsel s. Fort- pflanzung. Genitalorgane. Aspidiotus 155, 156 — Cy- pridae 21 , 22 — Euphau- sia 24 — Geometridae 162 — Lepidopteral63, 476 — Macrotoma 143 — Mallo- phaga 158 — Peripatus 65 — Phylloxera 157 — Psyl- lidae i54, 155 — Tricho- dactvlus 70. Ausführungsgänge = Ne- phridia Arthropoda 7 — Genitalanhänge Psyl- lidae 152 — Hermaphro- ditismus Callinectes 28, Cambarus 28, Erigone 103, Lepidoptera 476 — Kern- u. Zelltheilung Arthropo- da 2 — Ontogenetisches Apis 151, Chironomusl38, Cyclops21, Hexapodal35- 137, Trichodactylus 70 — Phylogenetisches Arthro- poda 5. (5 Accessorische Füße Sphaerotherium 115 ■ — Be- gattungsanhang der Ex- tremitäten Canthocamptus 19 — Crustacea 17, Te- trophthalmus 157^-Copu- lationsorganeCetonini 225, Lepidoptera 476 , Ontoge- netisches Aspidiotus 155 — Maxillardrüsen Epeira 68 — Penis Coccidae 156 — Spermatozoa Bewegung Peripatus 65, Periplaneta 145, Polyphemus22, Sper- matogenesis Arthropoda 7, Decapoda 27 — Taster A- raneidae 68. e Aphidae 156, Apis 149, Atyephyra 27, Cuma 23, 24, Halarachne 69 , Vespa 149 — Brutlamelle des 5. Extremitätenpaares Siriel- la 17 — Dauereier u. E- phippium Ontogenetisches Daphnia 22 — Ovarien Camponotus 152, Cherme- tidae 156, Embidinae 144, Formica 152, Anzahl der Eier Ephestia476, Folli- kelepithel Nepa u. No- tonecta 134, Pyrrhocoris u. Hexapoda 135, Inner- vation Peltogaster 19, Schwankungen in der Zahl der Eiröhren Bombus u. Carabus 163 , Tunica pro- pria Hexapoda 129, Ver- halten beiNahrungsmangel u . Viviparität Trichodacty- lus 71 — Receptaculum seminis Hymenoptera 151, Erneuerung bei der Häu- tung Arachnidae 77. Genopteryx n. 182. Geophilus 11, 122-124. Geochus 305. Geocoris 383. Geographische Verbreitung s. Faunistisches. Geometra 529-531. Geometridae 162, 474, 475, 483, 486-494, 497, 511. Geomyzina 433. Geonomini 297. Geophilidae 119, 121, 122. Geostiba 247, 251. Geotomus 379, 380. Geotrupes 88. Geranomyia 423. Geranorrhinus 305. Gerapompus n. 182. Gerarina n. 179, 183. Gerarus n. 179, 183. Gerba 496. Gerbatha 525. Gerephemera 180. Germalus 383, 384. Gerris 386. Gerstäcker, A. 168. Gerth, ... 452. Geruchsorgane s. Sinnesor- gane. Gervaisia 120. Geryon 50. Geschlechtsorgane s. Genital- organe. Geschlechtsunterschiede s. Sexualcharactere. Geschmacksorgane s. Sinnes- organe. Gesneria 437. Gesonia 522, 527. Gespinnst s. Biologisches. Gestro, R. 211. Gewicht s. Biologisches. Ghoria 515. Giard, A. 211, 342. Gibbium 287. Gibson - Carmichael , T. D. 115. Giebeler, W. 211. Gigantostraca 64. Gill, S. E. 452. Gilson, G. 1. Ginea 524. Gineste, F. 211. Gingla 496, 513. Girard, Maurice 211, 342, 452, 542. Giraud, Paul 369. Giraudeau, H. 453. Girpa 522, 523, 525, 527. Girschner, Ernst 406. Glaphyra 320. Glaphyrus 273. Glaresis 272. Glaser, L. 369, 453. Glaucopina 512. Gliederung s. Stamm. Gliedmaßen s. Extremitäten. Gloeodema 300, 305. Gloeosoma 258. Glomeridae 119, 120. Glomeris 116, 119, 120. Glossidiomorpha n. 440. Glossigona 432. Glossina 416, 437. Glossosoma 187. Glottulina 522. Glutops 420. Glycerina 53. Glycerius 243. Glycobius 315, 551, 553. Glycyphana 275. Glymma 259. Glyphipteryx 485, 489, 539. Glyphocrangon 46. Glyphocryptus n. 264-266. Glyphodes 534. Glyphonyx 277. Glyphypter^'x 4S9, 540. Glypthaga 316, 320. Glyptoderes 312. Glvptogona n. 106, 107. Glyptolus 330. Glyptoma 248. Glyptomerus 246. Glyptonotus 56. Glyptoscelis 551. Glyptotus 289, 291. Glyptus 239. Gnaphalodes 316. Gnaphaloryx 270. Gnaphosa 68, 77, 96. Gnathocera 275. Gnathocerus 290. Gnathoconus 380. Gnathonarium 104. Gnathoncus 259, 260. Gnathophausia 23 , 24 , 43, 45. Gnathotriche 496, 502, 504. Gnesis 290. Gnomidolon 316, 320. Gnophaela 496, 517. Gnophos484, 531, 532. Gnophodes491, 499. Gnorimus 274. Godara 535. Godartia 491, 503. Goding, F. W. 453, 542. Godman, F. D. 453. Goes316, 550. Goldenbergia 180, 181. Göldi, EmilA. 10, 369. Goldsmith, T. J. 453. Register. 583 Goldthwaite, O. C. 453. Goldthwaite, O. C, & A. J. Rose 453. Goliathus 274. Gomalia 511. Gomphini 178. Gomphocerites 200, 202. Gomphus 178. Gonatium 103, 104. Gonatonotus 46. Gonepteryx 475, 478, 487, 489, 492, 507—509. Gongylidiellum 103. Gongylidium 79, 103, 104, Gonia 365, 439. Gonibregmatus 123. Gonimbrasia 491, 519. Goniocarabus n. n. 243. Goniocotes 401. Gonioctena 552. Goniodes 401,402. Goniodoma 485, 539. Goniogaster n. 352. Goniognathus 238, 243. Gonioryetus 262, 263. Gonitis 527. Gonocerus 381. Gonocleonus 299. Gonocnemis 289. Gonodontis 531. Gonophora334, 335, 483, 521. Gonoplacidae 51. Gonoplax 51. Gonops 555. Gonoptericina 522. Gonopteryx 163,491,495,507. Gonyleptidae 109. Gonypes 427. Goodhue, Ch. F. 453. Goossens, Th., & A. G. Pou- jade 453. Gorham, H. S. 211. Gortyna 559. Goss, Herbert 72, 168, 192, 453. Gotch, Frc, & Jos. P. Laws 60. Göthe, Rud. 370. Gourguechon, L. 211. Gourret, Paul 10. Gozis, Maurice de 211. Graber, V. 10, 127. Gracilaria 485, 552. Gracilia 320. Graham- Young, A. 453, Gramesia 525. Grammodes 524, 527. Grammoptera 320. Grandidier, A. 453. Grandidier, A., & P. Mabille 453. Grapes, G. J. 453. Graphisurus 550, 551. Grapholitha 415, 484, 488, 538, 557, 559. Grapholostylum 438. Graphomyia 435, 437. Graphops 326, 327. Graphopsocus 174. Graphosoma 379, 380. Grapsidae 51. Grapsus 51. Grapta 495, 557. Graptodera 330, 546. Graptoleberis 41. Graptomyza 430. Graptopeltus 382. Graptostethus 382. Graptotettix 393. Graptotomus 383. Grassi, B. 67, 72, 127. Graziadei, . . . 406. Greeff, R. 168. Gregson, C. S. 453. Griffith, A. F. 453, Griffiths, A. B. 10, 127. Grimm, H. M. 342. Gronen, D. 168, 192. Gronops 305. Groß, H. 454. Große, Franz 127, 370. Grote, A. R. 454. Groult, P. 370. Grouvelle, Ant. 212. Gruber, A. 454. Grumm-Grshimailo,Gr. 454. Grunach, A. 454. Gryllacridae 199. Gryllacris 182, 199, 200, 202, 203. Gryllidae 196, 199, 202. Gryllodes 199, 200. Gryllomorphus 199, 200. GryllotalpalS, 131,133,134, 138, 145, 199, 200, 549. Gryllus 199, 200, 202, 549. Grzegorzek, A. 406. Guerinia 547. Guerne, J. de 11. Guillot, A. 454. Gulland, G. L. 1. Gygaeus n. 299, 305. Gyllenhalia n. 297, 305. Gymnancycla 533, 535. Gymnetis 275. Gymnetron 296, 298, 305. Gymnochila 264. Gymnocnemia 185, 190. Gymnodia 435. Gymnopternus 429. Gymnoeoma 440. Gymnosomina 440. Gymnostylia 438, 440. Gynaecia 502. Gynaephora 518. Gynandrophthalma 325. Gynautocerina 512. Gyrinidae 245. Gyrinus 245. Gyrophaena 248, 251. Gyrtona 522, 523, 527. H., J. M. 407. Haacke, Wilh. 11, 117. Haare s. Integumentgebilde. Haase, Er. 115, 117, 127, 406. Habelmann, P. 212. Habrocestum 98, 99. Habrophora 327. Habrosyne 521. Hadena 415, 475, 483, 4S9, 496, 525, 527, 548, 559. Hadenina 522. Hadennia n. 527.' Hadfield, H.W. 11. Hadites 104. Hadrambe 257. Hadrobraehypodan. 180, 181. Hadrobregmus 552. Hadroscelus n. 339. Hadrosoma 99. Haematera 502. Haematodes 248. Haematopinus 400. Haematopis 558. Haematojjota 426. Haemerosina 522. Haemobaphes 39. Haemobaphus 383. Haemobora 441. Haemonia 324, 325. Haftapparate. Drüse an den Haftlappen Macrotoma 142 — Ober- lippe Philopteridae 157 — Saugnäpfe an den Extre- mitätenHexapoda 132,Tri- chodactylus 70. Hageman, A. 454, Hagen, H. A. 73, 127, 168, 212, 370, 406, 454. Hagla 190. Hagnagora 496, 515. Hahn, ... 11, 212. Hahnia 104. Hahniidae 104. Halarachne 68, 69, 88. Halasz, A. 454. Halbherr, Bern. 212. Haiecia 277. Halesidota 495, 517, 557. Halesus 187. Halia415, 531. Halias415, 514. Halictus 346, 365. Haligryps n. 36. Halimedon 53. Haliophasma 54. Haliplidae 245. Haliplus 245, Halirages 53. Hall, C. G. 212, 454. Haller, G. 73, 212, 342, 370, 407, 542. Hallez, P. 127, Halliburton, W, D. 60. 584 Register. Halobates 3S6. Halocypridae 40. Halpeöll. Halter 189. Haltica330, 332,548,552,553. Haltichella 352. Halticini 330. Halyzia 337, 338. Hamadryas 493, 494, 499. Hamann, C. A. 454. Hamanumida 502. Harnet, H. 454. Hamilton, John 212, 454. Hammatochaerus 316, 320. Hammodrus 320. Hansen, H. J. 7,;73, 127. Haplandrus 291. Haplocheira 52. Haploneura 361. Haploneurion n. 361. Haplophlebium ISO. Haplophthalmus 57. Haplosonyx 330, 332. Haplous n. 284. Hapsifera 540. Haptoderus 238. Haptoneura 263. Haptonous 262, 263. Harding, M. J. 454. Hardy, Jan. 168. Harker, G. A. 454. Harmologa 484, 538. Harmouia 52, 477, 479, 482. Harnorgane s. Excretionsor- gane. Harpactes 79, 94. Harpacticidae 37. Harpacticus 37. Harpactira 93. Harpactopus 361. Harpactor 386. Harpagoneura n. 536. Harpalus 238, 243. Harpalyce 530, 532. Harpax 194. Harpinia 53. Harpobittacus n. 1S8. Harporhynchus 42. Harpyia481, 520, 529. Harrach, A. 212, 542. Harrington, W. H. 212, 454, 542. Harrisia 438. Harrisina 495, 512, 513. Harrison, J. 454. Hartog, Marcus M. 11. Hartwich, C. 370. Hasarius 98-101. Hasselt, A. W. M. van 73. Haswell, W. A. 7, 11. Hatton, Frank 407. Haury, Charles 212. Haut s. Integumentgebilde. Häutung s. Biologisches u. Integumentgebilde. Hawes, F. W. 454. Hayward, R. 212. Hazidae 493. Hazis 529. Heathcote, F. G. 115. Hebascus 263. Hebomoia491, 493. 507, 509. Hebridae 386. Hebrus 386. Hecabolus 354. Hecalus 390. Hectartrum 267. Hedobia 287. Hedylepta 533, 534, 536. Hedworth, T. H. 454. Heegeria 381. Helcogaster 286. Helcon 355. Helcyra 502. Heledona 291. Helia 527. Heliaca 525. Helichus 269. Heliconina 497. Heliconinae 501. Heliconius478, 495-497, 501. Heliocopris 271. Helioctamenus 264. Heliophanus 98, 100. Heliophobus 483. Helioscirtus 197. Heliothela 534. Heliothina 522. Heliothis 483, 487, 488, 523, 527, 550, 559. Heliothis 483. Heliozela 485, 540. Helladia 322. Helleria 58. Hellins, J. 454. Helomyzina 433. Helopeltis 389, 555. Helophilus 430, 431. Helophorus 245, 246 Helops 289, 291. Helota 264. Hemachra 524. Hemeristia 179, 180. Hemeristina 179, 183. Hemerobates 292. Hemerobiidae 185, 188. Hemerobiini 183. Hemerobius 181, 185, 188, 189, 547. Hemeroblemma 524. Hemerodromia 429. Hemer ophila 531. Hemicarabus 241. Hemicera 291. Hemicnemis 178. Hemilamprops 43. Hemilepistus 57, 58. Hemileuca 482, 519. Hemilissa 316, 320. Hemimachus 357. Hemimysis 44. Hemioniscus 15. Hemipenthes 428. Hemiplatys 327. Hemiptera. Anatomie, Ontogenie etc. 152-158 — Biologie, Ju- gendformen etc. 375 — — Faunistik 376-400 — Literatur 367-375 — Pa- läontologie 400, 401 — Schaden, Nutzen, Vertil- gungsmittel,Pflege 554-556 — Systematik 379-400. Hemipteroidea 141. Hemiptycha 392. Hemistenus 249. Hemiteles 357, 547 . Henderson, J. R. 7, 11. Henestaris 382, 383. Henicops 121, 123. Henoticus 268. Henschel, Gustav 212. Henshaw, Samuel 212. Hepatiscus 60. Hepialidae 483, 492, 521. Hepialina 511. Hepialus 162, 474, 477, 496, 521, 548. Heptagenia 173, 177. Heptaloba n. 541. Heraclia 496, 516. Hercostomus 429. Heriaeus 79. Heringia430, 431. Hermannia 89, 90. Hermaphroditismus s. Ab- normitäten und Fortpflan- zung. Hermesia 327. Hermetia 416, 425. Hermetiina 425. Herminia 489, 524, 527. Herminiidae 492. Herminiina 522. Hermoeophaga 330, 332. Herona 502. Herpaenia 507. Herrick, L. C. 11. Hersilia 104. Hersiliidae 104. Hersiliola 104. Hertwigia n. 422. Herve, ... 213. Herz s. Circulationssystem. Hesiodus n. 289, 291. Hesperia 492-494, 510, 511. Hesperidae 485, 487, 491, 492, 497, 510. Hesperocharis 507. Hesperus 246. Hess, W. 213, 342, 542. Hesse, E. 11, Hestia491, 493. 497, 498. Hestina 500, n02, 503, Regrister. 585 Hetaeriini 259. Hetaerius 259, 260. Heterachthes 316, 320. Heteramphus n. 300, 305. Heterandrium n. 352. Heteraspis 326, 327. Heterhelus 263. Heterocampa 557. Heterocarpus 45. Heterocera 476, 486, 490, 492-494, 497, 511. Heteroceridae 269. Heterocerus 269. Heterochthes 270. Heterocope 19, 38. Heterocrossa 538. Heterocrypta 50. Heterodidae 199. Heterogamia 196. Heterogamus 355. Heterogaster 383. Heterognatha 119, Heterogonie S.Fortpflanzung. Heterographis n. 535, 536. Heterograpsus 51. Heterogyna 360. Heterogynina 512. Heterolinus n. 247, 251. Heterometrus 111, 414. Heteromorphismus s. Poly- morphismus. Heteromysis 44. Heteromyzina 432, 434. Heteropalpus 320. Heterophaena n. 248, 251. Heterophasis 300, 305. Heterophryxus n. 56. Heteropoda 80, 97, 98. Heteropodagrion n. 178. Heteropsis 485, 491, 499. Heteroptera 142, 378. Heteropus 77, 78, 91, 556. Heterorrhina 274, 275. Heteroscada 498. HeteroStoma 121, 122. Heterostomus 263, 416, 426. Heterotarsus 289. Heterotemna 257. Heterothops 248, 251. Heterozyga n. 494, 538, 540, Hexaeentrus 199. Hexagenia 173. Hexamifoptera n. n. 527. Hexapoda. Anatomie, Ontogenie etc. (excl.Biologie) Allgemeines 2, 5, 7, 125-129, einzelne Ordnungen 142-164 — Li- terarische Hülfsmittel 545 — Schaden, Nutzen, Ver- tilguugsmittel, Pflege 545- 559 — Technik (Sammeln, Conserviren) etc. 545. Hexarthrum 298, 305. Hexeria n. 299, 305. Hexoplon 320. Heyden, Lucas von 213, 542, Heydenia 485. Heylaerts, F, J. M. 454. Hibernia 415, 532, 557. Hicetaon n. 289, 291. Hickson, Sydney J. 1. Hiera n. 496, 515. Hierodula 194, 196, 197. Hieronymus, G. 370, 407. Hilara 429. Hilarella 438, 439. Hilarimorpha 426. Hilgendorf, F. 11. Hilipus 551. Hill, L. F. 455. Hill, Thos. 455. HiUer, ... 455. Himantarium 115, 122, 123, Himantopteridae 513. Himantostoma 438. Himatidium 335. Himatismus 289, 291. Himera 327. Himerida n. n. 327. Hingula 527. Hipoepa 523, 524. Hiposcritia 477, 508, 509. Hipparchia 500, Hippasa n. 102. Hippidae 45, 49. Hippiscus 197. Hippobosca 415, 441. Hippoboscina 441. Hippodamia 337, 338, 552, 553. Hippodamiini 337. Hippolyte 16, 46, 530. Hippomedon 53. Hippoplectis 496, 532. Hircella n. 52. Hirn s. Nervensystem. Hispa 334, 335, 551. Hispinae 334. Hispodonta 334, 335. Hispropria 335. Hister 259, 260. Histeridae 259. Histiostoma 88. Histologisches. Aletia 162 — Crustacea 2 — Macrotoma 142, 143 — Psyllidae 153 — Tricho- dactylus 69, 70. Aufnahme von Kalk, Eisen etc. in die Gewebe Gam- marus 29 — Bindegewebe Chitin Limulus 61, Darm Decapoda 26, Ontogeneti- sches Gryllotalpa 145 — Drüsen Coxaldrüsen Limu- lus 6, Hautdrüsen Colop- tera 2, 132 — Ei Coccus 137, Cuma 24, Limulus 61, 63, Nepau.Notonecta 134, Pyrrhocoris 135 — Elasti- sches Gewebe Eristalis 159 — Fettkörper Arthropoda 2, Halarachne 69, Mallo- phaga 158, Psyllidae 152, Halteren Diptera 158, Harnsäure Saturniapuppe 164, Histolyse Musca 160 — Genitalorgane Cypri- dae 21,22, OvariumAtye- phyra 27, Tunica propria d. Eierstocksröhren Hexa- poda 129 — Histogenesis Musca 160, Histolyse Mus- ca 159, 160,Triehodactylus 71 — Integumentgebilde Chitinschicht Arthropoda 129, Embryonalhülle Scor- pionidae 68, Panzer Onto- genetisches Crustacea 2 — Musculatur Arthropoda 2, Limulus und Scorpionidae 6, Tracheata 66 — Ner- vensystem Peltogaster 19, Nerven und Ganglienzellen Arthropoda 2 — Sinnesor- gane Antennen Sphaero- therium 1 16, Augen Ar- thropoda 2 — 5, Cyclops- larve 20, Serolis 30, G. opticum Aeschna 144, Ge- schmacksorgane Hymenop- tera 130, Leuchtkörper Euphausia25 — Tracheen Myriopoda 2, Tracheen- kiemen Diptera 159 — Venen Androctonus 6 — Verdauungssystem Darm Decapoda 25—27, Mallo- phaga 157, Magen Aspi- diotus 155, Mitteldarm Hexapoda 133, 134 — Zellen- u. Kernstructur u. -theilung Arthropoda 2, Apisembryo 150, Deca- poda (Darm) 27, Hexapoda (Mitteldarm; 134, Scorpio- nidae 68. Hoden s. Genitalorgane. Hodgkinson, J. B. 455. Hoegea n. 320. Hoff'er, E. 213, 342, 455. Hofi'mann, Aug. 455. Hofmann, E. 168, 455. Höfner, D. 455. Hognan. 102. Holaniara 291. Holcaspis 243. Holcobius 287, 288. Holcocera 557. Holcorpa 183. Holcorrhinus 297. Holisus 247, 251. Holmberg, E. L. 342. Holmgren, A. E. 407. 586 Kegister. Holmgrenia 357. Holocentropus 187. Holocnemus 104, 105. Holodasia 435. Hololepta 226, 259, 260. Hololeptini 259. Holoparamecus 268. Holoplatys n. 98, 100, 101. Holopogon 411, 427. Holoptilus 386. Holostaspis 88, 89. Homalattus 100. Hoinalispa 334, 335. Homalister 261. Homalisus 280. Homalium 246, 251. Homaloblemmus 200. Homalodera 243. Homalolinus n. 247, 251. Homalomyia 436. Honialoneura n. 182. Homalopygus 261. Homalostylus n. 297, 305. Homalota 248, 251. Homalotrogus 300, 305. Homalotylus 352. Homarus 29, 47, 60. Homeyer, Alex, von 455. Homocnemia 393. Homodes 524. Homodexia n. 438. Homoeosoma 535. Homogynes 285. Homola 49. Homolamprima n. 270. Homolichas 64. Homolodromia 49. Homophoeta 330, 332. Homophyla 330, 332. Homoporus 352. Homoptera 142, 378, 483, 523, 528. Homopteridae 492, 522. Homopterina 522. Homothetidae 179-181. Homothetus 179, 180. Homotoma 152, 154, 394. Honrath, Ed. G. 455. Hookeria 352. Hopatrinus 289. Hopffgarteu, Max von 213. Hoplia 273. Hoplocampa 347. Hoplocephala 552. Hoplocneme 305, Hoplogaster 436. Hoplolichas 64. Hoplomerus 364. Hoplonyx 289, 291. Hoploparia 60. Hoplophora 89, 90. Hoplophorus 45. Hoplopidae 83, 93. Horama 512. Horia 295. Horistonotus 278. Hormius 355. Hormomyia 412, 420. Hormopleurus 382. Hormurus 111. Hörn, George 213. Horner, A.C. 213. Hornigia n. 484, 536. Hornius n. 320. Horväth, G. 73, 117, 168, 370, 407, 456. Horvathia 388. Hovalia n. 332. Howard, L. O. 342, 370, 407. Howel, W. H. 11. Howes, G. B. 11. Ho-wgate, E. 456. Hoy, P. R. 456. Hubbar d, H. G. 73, 214. Huber, Ludw. 342. Hudson, G. O. 456. Hudson, Vernon George 214. Huechys 393. Hulbert, . .. 456. Hulodes 483, 522-524, 528. Hülst, Geo 456, 472. Humbert, A. 456, 542. Hunt, C. B. H. 456. Huntemannia 37. Huphina 508, 509. Huth,...,& ... Schlechtendal 456. Hyadina 433. Hyale 52. Hyalitis 535. Hvalobathra n. 536. Hyalochilus 382, 383. Hyalodaphnia 32. Hyalomma 91. Hyalomyia440. Hyalurga 496, 517. Hyas5U, 281, 282. Hybernia 475, 477, 479, 484, 489, 531. Hybicus n. 299, 305. Hyblaea 527. Hvblaeina 522. Hybos 429. Hyctia 98. Hydaticus 305. Hydnobius 257. Hydnoeera 287. Hydora 269. Hvdrachna 92. Hydrachnidae 83, 92. Hydraena 246. Hydrellia 433, 548, 556. Hydreuretis n. 536. Hydrillodes 523, 527. Hydriris n. 536. Hydrobius 245. Hydrocampa 484, 534. Hydrocampidae 494. Hydrocharis 245. Hvdrodroma 92. Hydromedion 291, 292. Hydrometra 152, 386. Hydrometridae 386. Hydronomus 305. Hydrophilidae 245. Hydrophilus 2, 133,226,246. Hydrophoria 436. Hydrophorus 429. Hydroporus 245. Hydropsyche 184, 187, 191. Hydropsychidae 187. Hydroptila 187. Hydroptilidae 187. Hydroscapha 259. Hydrotaea 436. Hydrotoma 92. Hyetodesia 436. Hygochroa 531. Hygraula n. 535, 536. Hylaeus 365. Hylaspes 332. Hyleeoetus 550. Hylemyia 436. Hylesinus 550. Hvliea 390. Hyllus 100, 101. Hylobiinae 299. Hylobius 299, 305. Hyloicus 511. Hylotrupes 551, 552. Hylotoma 347, 348. Hylurgops 552. Hylyphantes 103. Hymeneus n. 247, 251. Hymenia 534. Hymenodora 46. Hymenopenaeus 46. Hymenoplia 273. Hjmenoptera. Anatomie, Ontogenie etc. 148-152 — Biologie etc. 345-346 — Faunistik 346- 367 — Literatur 339-345 — Paläontologie 367 — Schaden, Nutzen, Vertil- gungsmittel,Pflege 553,554 — Systematik 347-367. Hvpaetra 524. Hvpanartia 490, 491, 496, 502, 503. Hypanis491, 502, 503. Hyparinus n. 299, 305. Hvpebaeus 285, 286. Hypena 523, 524, 526-52», 558. Hypenidae 492. Hypenina 522. Hypera 297, 298. Hyperaspini 337. Hyperaspis 337-339, 553. Hvperchiria 482, 519, 557, 558. Hyperectes 175. Hyperetea 175. Hyperetis 557. Register. 5S7 Hyperia 2, 54. Hyperiidae 15, 54. Hyperiopsis n. 54. Hypermallus 320. Hypermnestra 509. Hyperomorpha n. 300, 305. Hyperplatus 551. Hypertropha 538. Hypexilis n. 320. Hyphantria 557, 558. Hvpoaspis 88, 89. Hypoblenum n. 99, 100. Hvpoborus 312. Hypocala 483, 522, 523. Hypocalidae 492. Hypocephalus 315. Hypocera 419. Hypochalcia 534. Hypochra 434, 435. Hypochroma 532. Hypocoelus 279. Hypocrita 514. Hypocthonius 90. Hypoderas 85, 86. Hypoderma 549. Hypogrammidae 492. Hypogrammina 522. Hvpolampsis 332. Hvpolimnas 478, 480, 481, 494, 502-504. Hypolithus 278. Hypolycaena 491, 505. Hypomecus 299. Hypomolyx 551. Hyponomeuta2,485,539, 547. Hyponotus 300. Hypophyllus 429. Hypopyra 522, 524. Hypopyridae 492. Hypopyrina 522. Hypospila 524. Hvpotnenemus 312. Hypotia 485, 536. Hypotrichia 272. Hypsauehenia 392. Hypsidae 493. Hypsioma 320. Hypsipetes 480, 532. Hvpsopygia 534. Hvptiotes 106. Hysteropterum 393, 394. Hystrisiphona 438. Jack, J. G. 370, 456. Jaeoby, Martin 214. Jaera 56. Jaeropsia n. 56. Jager, J. 456. Jakowleff, W. E. 214, 370. Jalla 379, 380. Jana 517. Janassa 495, 496, 520. Janira 56. Janson, Oliver E. 214. Janssen, Ed. 456. Janus 98, 100. Japygidae 166. Japyx 112, 166. Jassidae 378, 379, 390. Jassus 390, 391, 555. Jausson, L. 456. Jaworowski, A. 127, 407. Ibidion 320, 339. Ichneumon 130, 349, 357. Ichneumonidae 357, 549. Ichnocnemis 320. Ichnoderus 251. Ichthyura 482, 495, 520, 557. Icius 98, 100. Ictidops 99, 100. Idaea 532. Idarnella 352. Ideopsis 491, 493, 497. Idia432, 437. Idiocerus 390, 391. Idioneura 178. Idiops 94. Idmais 490, 491, 507. Idogenia n. 299, 305. Idolia n. 261. Idolomorpha 196. Idolum 194, 197. Idotasia 299, 305. Idotea 19, 29, 32, 55. Idoteidae 55. Idya 37. Jeflferys, T. B. 456. Jeffrey, W. R. 127. Jenkin, A. H. 456. Jhering, H. von 370. Ilia 50. lUigeria 438. llus n. 289, 291. Ilyobates 251. llyocryptus 40. Ilythyia484, 488, 534. Imathia n. 299, 306. Imera n. 299, 306. Imhof, Othmar Emil 11, 407, Imirus n. n. 256. Imma 525. Immedia 290. Imtempus 255, 256. Inachus 50. Incala 275. Inchbald, Peter 407, Incurvaria 557. Iniopachys 241. Ino 546, 559. Inopeplus 267. Inophloeus 306. Inopsis 496. Inseetenkunde, allgemeine 542—559. Insecta 5. s. a. Hexapoda. Integumentgebilde. Macrotoma 142 — Tricho- dactylus 69. Anheftung von Sperma- tophoren Peripatus 65 — Aufnahme von Kalk, Eisen etc. Gammarus 29 — Bor- sten, Haare, Schuppen etc. Cyclopslarve 20, Angel- haare Chrysopalarve 145, Augenbürste an der Vor- dertibia Catocala 163, Mundtheile Crustacea 15, 16, Schuppen Lepidoptera 163, 475, 476, Sinneshaare an denAntennenHymenop- tera 148, Tastborsten Gam- marus 39, Serolis 30, Wachshaare Psyllidae 153 — Chitinschicht Histolo- gisches Arthropoda 129 — Embryonalhäute Gryllo- talpa 146, Limulus 62, 63, Phylloxera 157, Scorpioni- dae 68 — Epidermis Re- generation Musca 161, Zusammenhang mit der Musculatur Arthropoda 2 — Färbung Decapoda 28, Natur derselben Coleop- tera 139, Lepidoptera 475, Wiederherstellung dersel- ben Coleoptera 225, Farb- stoffe u. Pigmente Poly- phemus 22, Chemisches Puppenhülle Saturnia 164, Raupen 139, Ontogeneti- sches Atyephyra 28 — Haut Embidmae 144, Psyllidae 152, Häutung Arachnidae 77, Astacus28, Atypus 68, Coccidae 156, Gnaphosa 68, Homarus 28, Macrotoma 143, Tricho- dactylus 70 — Ontogene- tiscnes Peripatus 66, PanzerbildungCr ustacea2 , Verhalten bei derMetamor- phose Aspidiotus 155 — Respirationsfalte Schizo- poda 24 — Rückenorgan Homologie Crustacea 18, Ontogenetisches Cyclops 21, Gryllotalpa 146 — Rück enschildCoccidae 156, Phylogenetisches Deca- poda 6, Limulus 63, Dor- salschilder Chilognatha 71 — Schwanzstacheln am Telson Leptostraca 23 — SkeletFormica 149, Chitin- gerüst des Ejaculations- apparates Cypridae 22, Flugskelet Hexapoda 133, Phylogenetisches Limulus 6, Scuta und Terga Che- misches Cirripedia 7 — Sexuelle Charactere Serolis 30 — Sternalplatte Hala- 588 Register. rachne 68, Sternite Chilo- gnatha 71. Drüsen: Coleoptera 132, Cementdrüse Cirripe- dial9, CoxaldrüsenLimu- lus 5, 6, Duftapparate Lepidoptera 163, Haftdrü- sen Hexapoda 132, Scha- lendrüse Function Cyelops 21, Spinndrüsen Geophilus 115, Wachsdrüsen Coccidae 156, Psyllidae 153. Johnson, W. F. 168,214,456. Johnston, H. H. 456. Joigneaux, P. 542. Jolaus 491, 506, Jona n. 99, 100. Jones, A. H. 456. Jones, E. D. 456. Jones, T. Rup., & James W. Kirkby 111. Joppa 358. Joppidium 357, 358. Jordan, R. C. R. 456. JordanayMorera, R. 73, 117, 407. Joseph, Gustav 407. Josia 496, 497, 515. Josiina 514. Josiodes 490. Josioides 496, 515, Josiomorpha 496, 514, 515. Jotheriura 322. Jotus 98, 100. Joy, E. 457. Ipana 530. Iphimedia 53. Iphiopsis 88. Iphis 88, 89. Iphthima491, 499. Iphthimus 293. Ipidia 262. Ipina 262. Ips 262, 263, 552. Ipsaphes 267. Ipsichora 299. Ipsimus n. n. 256. Ipsnola n. 394. Iraota481, 506. Irbisia 388. Iris 196. Ironeus 320. Irritabilität s. Physiologi- sches. Isacantha 107. Ischiodontus 277, 278. Ischiogonus 355. Ischioloncha 316, 320. Ischiopsopha 274, 275. Ischnocolus 80, 93, 94. Ischuocorys 383. Ischnodemus 382, 383. Ischnomias n. 306. Ischnorhynchus 382, 383. Ischnoso'ma 56. Ischnura 178. Ischnurus 111. Ischnus 358. Ischyja 483, 522, 523. Ischyrolampra n. n. 327. Ischyropsalis 108. Ischyrosyrphus 431. Ishikawa, Chiyomatsou 11. Isicerdes n. 289, 291. Isidus 277. Ismene 485, 491, 492, 494, 510, 511. Isobates 120. Isocerus 291. Isodema 502. Isodermus 385. Isodontia 361. Isomerida 320. Isomer in thus 306. Isometroides n. 80, 111. Isometrus 79, 110, 111. Isomira 294. Isonychia 177. Isopoda 18, 30, 54, 5S, 59. Isopteryx 534. Isorrhynchinae 299. Isosoma 350, 352, 547, 553, 554. Isosticta n. 178. Isostola 496, 517. Isoteinon 493, 511, Isotoma 165, 166. Isotrogus 300, 306. Isoxia n. 107. Issus 393, 394. Itama 530. Itamus 427. Ites336. Ithomia 478, 495-499. Ithone 185, 337, 339. Ithris 265, 266. Ithvporinae 299. Ithyporus 304, 306. Itodacnus n. 277, 278, Ituna 495, 496, 498, 499. Judeich, J. F,, & H. Nitsche 543. lulidae 119, 120. lulistus 286. lulodis 276. lulopsis 124. lulus 119, 120_, 121,124,548. Junge, . . . 457. Junonia480, 491, 492, 496, 502-504. Jurinia 439. Jurus 111. Ivongius 327. Ixias491, 493, 507, 509. Ixodes 91. Ixodidae 91, 549. Kaliosysphingia 348. Kallima 493, 502, 505. Kane, W. F. de Vismes 457. Karpelles, Ludw. 73. Karsch, Ferd. 73, 117, 192, 214, 371, 407, 457, 543. Katha 515. Katter, Fr. 214. Kautz, E. 457. Kay, R. 457, Keimblätter s, Ontogeneti- sches, Kelecsenyi, C. 457. Kelisia 393, 394. Keller, C. 73, 371, 543. Kellicott, D. S. 457. Kent, "VV. Saville 169. Kerr, W. J. 457. Kerry, T. 457. Kessler, H. F. 371. Kew, H. W. 457. Keyserling, Graf E. 73. Kheil, N. M. 457. Kiefer s. Verdauungssystem. Kieffer, J. J. 73, 169, 371. Kiemen s. Respirationssy- stem. Kilman, A. H. 457. King, James J. 169. King, James J., & K. J. Mor- ton 169. King, T. W. 457. Kingsley, J. S. 1, 60, Kirby, W. F. 342, 457, 543. Kirbya 438. Kirkby, James W. 12. Kirkbya 59. Kirsch, Th. 214, 457. Kisanthobia 276. Kittdrüsen s. Integumentge- gebilde. Kittsteiner, . . . 457. Kleidocerus 382. Kloake s. Verdauungssvstem. Kobelt,_W. 73, 475. Koenenia n. 112, Koeneniadae n. 111, 112. Kohl, Fr. Fr. 342. Köhler, Rene 8, 12, 371. Kohlhoff, C. 214. Kolbe, H. J. 169, 214, 458. Kölbel, Carl 12. Kolenatia 441. König, Alex. 371. Könike, F. 73. Konow, Fr. AV. 342. Kopf s. Stamm. Kophene 478, 520, 521. Koritsanszky, Janos 543. Körnicke Fr. 543. Korotneff, A. 127. Körperanhänge. Analgriffel Träger des Ge- ruchsinnes Periplaneta 131 — Bauchtaster Halarachne 69 — Phylogenetisches Ar- thropoda 5 — Schwanz- Register. 589 stacheln am Telson Lepto- straca 23. Korscheit, E. 127. Kowalevsky, A. 127. Kowarz, Ferd. 407. Kraatz, G. 214. Kraatz-Koschlau, A. von 21 5. Kradibia 352. Kraft, A. 372. Kramer, P. 67, 73. Kräpelin, Carl 12. Kraus, M. 215. Krause, W. 127. Kricogonia 480, 495, 507, 508. Kriechbaumer, Jos. 342. Kriechbaumeria n. 358. Krukenberg, C.Fr.W. 1, 127. Kühn, H. 464. Kulczycki, W. 12. Kulczynski, Wladyslaw 73. Künckel d'Herculais, J. 343, 458. Kusta, Joh. 74, 117, 169, 192. Kuthv, D. 169, 215. Kuwert, A. 215. Kytorrhinus 314. Labanda 525. Labetis 294. Labia 196. Labidostomis 325. Labidura 137, 196. Labops 389. Laboulbene, Alex. 407, 458. Laboulbene, A. & P. Megnin 67, 74. Labrocerus n. 269. Labromimus n. 264-266. Labulla 105. Lacera 522, 524. Lachnina 395. Lachnoptera 490, 501. Lachnosterna 273, 552. Lachnus 554, 555. Lacides 482. Lacon 277. Lactica 330, 332. Laelaps 88, 89. Laelia 518. Laemargus 39. Laematophilus 52. Laemobothrium 158, 401, 403, 404. Laemocharis 512, Laemophloeus 267, 552. Laemosaccinae 2^9. Laemosaccus 299, 306. Laemostenus 238, 243. Laena289, 291. Laeosopis 485. Laertias 481. Lafitte, P. de 371. Lagarus 238. Lagoa 475, 482, 518. Lagocheirus 316. Lagochirus 320. Lagoptera 483, 493, 524,525, 527. Lagriidae 294. Lagyra 529. Lameere, Auguste 215, 458. Lamiessa n. 316, 320. Lampa, S. 458. Lamprima 270. Lamprocera281, 282. Lamprodema 383. Lamprogaster 432,435. Lamprohiza n. n. 280-282. Lamprolina 329. Lampromerus 316. Lampromyia 426. Lamprophorus 281, 282. Lamprops 43. Lamproptilia n. 181. Lamprosoma 326, 327. Lamprosphaerus 327. Lamprostus 241. Lampyridae 549. Lampvrini 280. Lampyris 138, 280-283. Lampyroidea 281, 282. Lamura 524. Lamyctes 123. Lancelevee, Th. 74. Landois, H. 127, 215, 343, 407, 458. Lang, H. Ch. 458. Langkavel, B. 343. Languria 336. Languriidae 336. Langurites 336. Lankester, E. R. 1. Lankester, E. R., W. B. S. Benham&E. J. Beck 1. Lansberge, J. W. van 216. Lansdell, Henry 343. Laodice 299. Laogenia 300, 306. Laophante 37. Laora 496, 517. Laphria416, 427, 428. Laphrina 428. Laphygma 479, 483, 523, 547, 556, 558. Larentia 478, 480, 481, 484, 496, 530, 532. Largus 382. Larinia 108. Larinus 299, 306. Larsson, Magnus 407. Larvenstadien s. Ontogene- tlSCllGS Lasaeola 80, 105, 106. Lasconotus 266. Lasiocampa 415, 475, 482, 487. Lasiocampidae 482,489,492, 493, 518. Lasiocampina 518. Lasiocera 536. Lasiocoris 383. Lasiodactylus 263. Lasioderma 287. Lasiopa 424. Lasiops 436. Lasioptera 412, 416, 420, 421, 547. Lasiophthicus 430, 431. Lasiostola 291. Lasius 151, 359. Lastrema 264. Latelmis 269. Laterigradae 112. Lathonura 40. Lathridiidae 268. Lathridius 268. Lathrobiina 247. Lathrobium 246-248, 251. Lathrodectus 105. Latona 40. Latzel, Rob. 117. Laugier, E. 408, 543. Laurona 496, 514, 515. Lauxania 432-434. Laverna 485, 488, 538, 539. Laws, Jos. P. 60. Leaena n. 102. Leaia 58. Leander 28, 46, 56. Lebadea 502. Lebeda 518. Lebensdauer, Lebensweise, Lebenszähigkeit s. Biolo- gisches. Leber s. Verdauungssystem. Lebia 243. Lebiini 239. Lecanium 136, 399, 400, 547, 554, 555. Lechenaultia 438. Leconte, John 216. Ledocas n. 281, 282. Ledra 391. Ledropsis 390. Lee, A. Bolles 127. Leesberg, ... 216. Lefevre, Ed. 216, 371. Lehmann, . . . 458. Leibesfiüssigkeit s. Circula- tionssystem. Leibeshöhle. Halarachne 69. Eierraum Cuma 24— Kör- perfiüssigkeit melanisirt Lepidoptera 164 — Meso- u. Metaphragma sind Mus- kelsehnen Hexapoda 140 — Ontogenetisches Cyclops 20, Gryllotalpa 146, Limu- lus 61 , Peripatus 66 — Raum am Ende der Coxal- drüse Limulus u. der An- tennendrüse Crustacea 7 • — 590 Register. Verhältnis zu den Blut- bahnen Androctonus 6, Co- pepoda u. Daphniidae 22, Phylogenetisches Arthro- poda 5 — Wanderzellen Gryllotalpa 147, Rolle der Leucocyten bei der Histo- lyseMusca 159, 160. Leidy, J. 74. Leiognathus n. 88, 89. Leiolichas 64. Lejops 431. Leiopus 316, 320, 550, 552. Leiosoma 89-91. Leistus 237, 243. Lelaps 352. Lelievre, E. 458. Lema 324, 325, 552. Lembodes 306. Lemoine, V. 127, 371. Lemoniidae 492, 497, 605. Lendenfeld, R. von 127. Leng, Charles W. 216. Lennier, G. 12. Lepas 35. Lepadidae 7, 35, 58. Lepadites 59. Lepeophtheirus 39. Leperditia 58, 59. Leperditiae 58. Leperita 264. Lepidocyrtus 166. Lepidomyia 430. Lepidophorus 299. Lepidoptera. Abnormitäten 475 — Ana- tomie ,Ontogenie etc. 162 -164, 480 — Aufzucht 481 — Biologie 476-480 — Di- versa 474 — Faunistik 485- 541 — Hülfsmittel 474 — Literatur 442-474 — Mor- phologien . Physiologie47 5, 476 — Oconomisches 474, 557-559 — Paläontologi- sches 541 — Systemati- sches 497-541. Lepidoselaga 426. Lepidostoma 185, 187. Lepidurus 42. Lepisesia 511. Lepisma 2, 166. Lepismidae 166. Lepismina 165, 166. Lepreus 111. Leprevost, C. 458. Leprieur, C. E. 216. Lepronoia 327. Leprosoma 379, 381. Leprotes 326, o27. Leptacinus 247, 248, 251. Leptarthrus 427. Leptaulax 271. Lepthyphantes 105, 106. Leptidae 420, 426. I.eptidule 496, 515. Leptinidae 258. Leptinotarsa 329, 548. Leptis 426. Leptobelus 392. Leptocarabus n. 237, 243. Leptocentrus 392. Leptoceridae 187. Leptocircus 478, 509. Leptocometes 320. Leptoderus 257. Leptodora 2, 42. Leptogaster 427. Leptogasterina 427. Leptoglossus 555. Leptoglyphus n. 265, 266. Leptognathia 54. Leptolepyrus 309. Leptomastix 352. Leptomysis 43. Leptoneura n. 180, 181. Leptopelma 94. Leptophobia 507. Leptophora 429. Leptophr}\s:us 56. Leptophyes 198. Leptopinae 299. Leptopodina 433. Leptops 299. Leptopsaltria 393. Leptoptylus 551. Leptopus 387. Leptorchistis n. 89, 90. Leptorhynchus 42, Leptoschema n. 278. Leptosia 507. Leptosoma 513. Leptoson)-x n. 332. Leptosphaeroma 55. Leptospini 297. Leptostraca 18, 23, 43. Leptostylus 320, 551. Leptotrachelus 553. Leptotrichus 57, 58. Leptura 316, 320, 552. Lepturges 321. Lepturoides 279. Leptusa 248, 251. Lepyrodes 533. Lepvronia 393. Lepyrus 299, 306. Leriche, J. B. 343. Lerina 496. Lernaea 39. Lernaeidae 39. Lernaeolophus 39. Lernaeonema 39. Lernaeopoda 39. Lernaeopodidae 39. Lerra 517. Lestes 171, 177, 178. Lesteva 251. Letchena n. 533, 536. Lethierry, L. 371. Lethrus 272. Letocles 514. Letzner, Karl 216, 371. Letzneria 316. Leucania 483, 488, 489, .523, 525, 528, 547, 559. Leucaniina 522. Leucanitis 490, 523, 528. Leucarctia 496, 516. Leucaspis 156, 399, 40i). Leuchten u. Lenchtorgaue. Crustacea 19 — Luciola 148. Ei u. Imago Lampy- ris 138 — Nebenaugen Euphausia 24, 25 — Phos- phorescenz Scolioplanes 117. Leucidia 507. Leucinodes 533, 536. Leuckart, Rud. 127, 343. Leucocelis 274, 275. Leucocera 329. Leucochitonea 510. Leucohimatium 268. Leucoma 415, 517. Leucomelina 436. Leucon 43. Leucophasia 485, 507. Leucopis 435. Leucopsis 352. Leucosiidae 49. Leucosomus 306. Leucostoma 414. Leucothoe 30, 53. Leucozona 429, 430. Leuthner, Franz 217. Leveille, A. 217. Lewcock, G. A. 217. Lewis, George 217. Leydig, Fr. 2. Leydigia41, 42. LibeUula 113, 171, 172, 178, 183 Libellulidae 177, 549. Libinia 50. Libnotes 423. Libotes n. 328. Librodor 262, 263. Liburnia 393, 394. Libythea 481. Libytheidae 493. Libytheina 505. Libytheinae 481. Libythina 502. Lichas 64. Lichidae 64. Lichomolgus 38. Lichtenstein, J. 371, 458. Ligia 57. Ligiae 57. Ligidium 57. Lignyodes 298, 306. Lign;y)odesia 440. Lignyodini 298. Ligurinus 98. Register. 591 Lilljeborgia 53. Limacodes 491, 520, 551, 558. Limacodidae 483, 491-493, 520. Limacodina 520. Limbeck, Riid. v. 65. Limenitis 476, 478, 481, 488, 502, 503, 505, 558. Limnaeum 238. Limnas 478,480, 497. Limneria 357. Limnetis 23. Limuobaris n. 298, 306. Limnobia 423. Limnobiina 423. Limnocalanus 38. Limnocarabus 241. Limnochares 92. Limnia 433. Limnophilidae 187. Limnophilus 187. Limnophora 436. Limnoria 56. Limosia 432. Limiilus 2, 5, 6, 61-64. Lina 414. Lindemann, Karl 408, 543. Lindström, G. 74. Linguatulidae 82. Linidius 251. Liniscus n. 328. Linnarsson, G. 60. Linoderus n. 247, 251. Lintner, J. A. 458. Linus n. 100, 101. Linyphia 67, 105, 106, 555. Liobunum 108, 109, Liocaris 388. Liocranum 96. Lioderes 318. Lioderina n. 321. Lioderma 261. Liedes 89, 90, 257, 258, 484, 530. Liolobus n. 382, 383. Lionotus 364. Liophaena 248. Liops n. n. 430, 431. Lioptilus 541, Liopus 321, 551. Liotheidae 157,401, 403. Liothulus 479. Liparidae 482, 489, 492-494, 517. Liparis 487. Liparochrus 272, Liparthrum 312. Lipernes 280. Lipeurus 157, 401-403. Lipoptena 441. Lipothyrea 300. Liprus 332. Lipura 166. Lipuridae 166. Lispa 436, Lispe 432. Lispinodes 248, 251, Lispognathus 50. Lissonota 358. Lissonotus 321. Lissopterus 239, 243. Listrochelus 273. Lita 477, 485, 539, 540. Litargus 268, 269. Lithacodes 557. Lithentomon 179, 180, Lithilaria n, 528. Lithobiidael21, 123. Lithobius 116, 118,123. Lithocampa 483. Lithocharis 248, 249, 251. Lithocharodes 247, 248, 252, Lithocolletis 485, 486, 539, 540, 557. Lithodes 29. Lithomantis 140, 141, 179, 202. Lithonoma 332, Lithophasma n. 182, 202, 203. Lithophilus 337, 338. Lithosia 488, 489, 491, 496, 514, 516, Lithosialis 179, 183, 203, Lithosiidae 482, 490, 492- 494, 496, 514, Lithosina 514. Lithostege 529, 532, Lithyphantes 79, 80, 105, 106. Litodactylus 306, Litoxenus n. 389. Littorimus n. 269. Livia 394. Livett, H, W, 458. Lixus 298, 299, 303, 306. Llaveia 399. Lloyd, A. 343. Lobobrachus 239, 243. Lobophora 489, 496, 531, 532. Loboptera 196. Lobotrachelus 299, 306. Lochmaeus 482. Locoiuotiou. Daphnia 22 — Homarus 28, Blastodermzellen Gryl- lotalpa 1 45 — Flug Hexa- poda 132, 133, Hemiptera 375, Lepidoptera 478, während der Begattung Diptera 416 — Klettern Hexapoda 132 — Sperma- tozoa Peripatus 65, Peri- planeta 145, Polyphemus 22. Locusta 199. Locustidae 198, 199, 202. Lodeesen, J, W. 458. Loewia 438, 439, Lomaptera 274-276, Lomatia 428, Lomographa^ 530, Lonchaea 434, 556. Lonchaeina 434. Lonchodes 533, 536. Lonchoptera 429. Lonchopteridae 429. Longitarsus 330, 332. Looss, A. 2, Lophocarenum 103. Lophoderus 558. Lophodonta 482. Lophogaster 43, 45. Lophogastridae 17, 43, 45. Lophomma 103. Lophonotus 125. Lophopaeum 321, Lophoptera 525, 528, LophopterjTc 520, Lophyrus 347, 415, 547, 553. Loptocampa 558. Lopus 388. Lordyrodes n, 262, 263, Loricaster 258, Loricula 59, 60, Loricuiina n. 60, Lovett, Edw, 12. Low, Franz 74, 169, 372, 408. Low, Paul 372, Lowe, Fr. E. 458. Lowne, B. T. 2. Loxoconcha 59, 60. Loxosceles 104. Loxura 505. Lozogramma 530. Lubbock, S. J. 343, Lucanidae 269. Lucanus 131, 269. Lucas, H. 12, 74, 192, 217, 343, 408, 458. Lucasius 57. Lucia 494, 506, Luciani, L. 127. Lucidota 281, 282, Lucifer 15. Lucilia 415, 416, 432, 437. Lucinia 502. Lucio 281, 282. Luciola 148, 281, 282, 546. Luciolini 281, Ludgrove, Thomas 217, Ludia491, 519. Ludius 278, 279, Ludwig, F, 343. Ludwig, , . . 408. Luehdorfia 485, 509. Lugger, Otto 217. Lungen s. Respirationssy- stem. Luperina 487, 528. Luperolophus n. 332, Luperus 332. Lupraea n. 330, 332. 592 Register. Lusby, J. 458. Lusia 524. Lutz, K.. G. 543. Lutzau, C. von 458. Lycaena 47ü, 477, 480, 486, 487, 490, 491, 493, 494, 496, 505, 506. Lycaenidae 481, 4S5, 487, ■491, 493, 505. Lycaina 280. Lyces 496, 515. Lycidas 98. Lycidula 321. Lycini 280. Lycomorpha 496, 512, 513. Lycorea 495, 496, 498, 499. Lycosa 78-80, 102. Lycosidae 93, 102. Lycofsoides 94, 104. Lycostomus 280. Lyctus 288, 546. Lycus 280. Lyda 347, 553. Lygaearia 382. Lygaeidae 378, 382. Lygaeosoma 382-384. Lygaeus 382-384, 389 , 548, 555. Lygia 532. Lygistopterus 280. Lygniodes 523. Lygus 388, 389, 548, 555. Ljinantria 517. Lymexylon 550. Lymexylonidae 287. Lynceidae 18. 23, 32, 41. Lynch- Arribalzaga, F. 217. Lynchia 441. Lyncodaphnia 40, 41. Lyncodaphniidae 23. Lyonetia 475. Lype 187. Lyperosoma 238. L)-ponia 2S0. Lyprobius 57. Lypsimena 321. Lyrcea 530. Lyreus 264. Lyrosoma 258. Lysianassa 53. Lysiopetalidae 119, 120. Lysiopetalum 120. Lysizone 300. Lysmata 46. Lyssomanes 100. Lystra 401. Lystrocteisa 98. Lythria 532. Maassen, P,, & A. "VVeyding 459. Mabille, P. 459. Mabra n. 533, 536. Macaldenia n. n. 483, 522 528. Maearia 530, 531. Maccevethus 381. Macchiati, L. 372. Mac Cook, H. C. 74, 192, 343. Mac Coy, Frederick 192. Machaerites 255, 256. Machaerota 393. Machaon 509. Machilis 165, 166. Machimus 414. Machin, W. 459. Mac Intosh, W. C. 12. MacLachlan, E. 169, 217, 459. Macleay, William 217. Macmillan, W. 459. Mac Munn, C. A. 2, 12, 128. Mac Murrich, J. Playfair 74, 408, 543. Macquartia 414. Macracantha 107, 108. Mac Rae, ^V. 459. Macrobasis 295. Macrocentrus 355. Macrocera 421. Macroceratae 420. Macrocheilus 242. Macrocoleus 388. Macrocryptus 357. Macrodactylus 273, 552. Macroglossa 477, 479, 481, 494, 512. Macroglossae 497, 511. Macrolycus 280. Macromyia 438. Maeronemurus 185, 190. Macronota 276. Macronovius n. 338, 339. Macronychia 439. Macropalpus 355. Macrophya 347. Macropoda 289-291. Macropsis 44, 390, 555. Macrosargus 425. Macroscytus 380. Macrotarsus 297, 306. Macrothrix 40, 41. Macrotoma 137, 142, 315. Macrura 15-17, 59. Mactraria 294. Madopa 523. Maenas 483, 522. Maenoleneura 496. Maera 53. Magaris n. 299, 306. Magdalis 296, 298, 306, 550. Magretti, P. 343. Magulaba 523. Maja 25, 26. Majdae 50. Maindron, Maur. 343. Maira 427. Makloskie, G. 128. Malachius 285, 286. Malacodermata 191, 280. Malacosoma 332. Malacostraea 15-18, 23, 64. Mallodon 315, 550, 553. Mallophaga. Anatomie, Ontogenie etc. 141, 152, 157 — Faunistik 401-405 — Literatur 367- 375 — Parasitismus 549 — Systematik 401-405, Mallophora 428. Mallosia321. Mallota 430, 431, 556. Mallotinae 431. Malpighi'sche Gefäße s. Ex- cretionsorgane. Malthaster n. 284. Malthinus 284. Malthodes 284. Mamestra 479, 483, 523, 525, 528, 548. Mania 525. Maniola 500. Mann, B. P. 459. Mann, J. 459. Mannophorus 321. Manobia n. 332. Manticora 236. Mantidae 141, 190, 200, 202. Mantis 68, 194, 196, 550. Mantispa 185, 188. Mantispidae 185, 188. Marapana n. 523, 528. Marasmia 534, 535. Maratus 98. Marchai, C. 217. Marellus 255. Margarinotus 259. Margaritia 535. Margaronia 484, 536. Marimatha 528. Maronius 284. Marpissa 98. Marptusa 77, 99, 100. Marriott, F. F. 459. Marsden, H. W. 459. Marseul, S. de 217. Marshall, T. A. 343. Maruca 534. Maseochara 252, 255. Masicera 415, 417, 439. Maskell, W. M. 372. Maso 103. Masorcus 238. Mastacidae 197. Matella n. 522, 528. Mathew, G. F. 459. Matthew, G. W. 60, Matthews, A. 218. Mauia n. 313. Maxula 524. Mayr, Gust. 343. Mc s. Mac. Meade, R. H. 408. Mecaspis 306. Register. 593 Mecedanops 265. Mechanitis 478, 495, 496, 498, 499. Mecinini 298. Mecinus 298, 306. Mecistes 328. Mecistocephalus 123. Mecistrocerus 306. Mecometopus 321. Meconema 133. Meconemidae 198. Mecopoda 198. Mecopodidae 198. Mecopus 299, 3U6. Mecorhopalus 252. Mecyna 536. Mecynodera 325. Mecynome 316, 321. Medaeus 50. Medeterus 429. Medon 248, 252. Medoria 438. Megablattina n. 201. Megabunus 108. Megacerus 274. Megacetes 306. Megaehile 148, 365. Megacoelum 388, 389. Megacriodes 317. Megadontus 241, 242. Megagenius 289. Megalinus 255. Megalodes 483. Megalodontes 347. Megalomus 185, 189. Megalophthalmus 281, 283. Megaloprepes 438. Megaloprepus 178. Megaloptera 141, 188. Megalopygidae 482, 518. Megalopygina 520. Megalosoma 120. Megalostomis 325. Megalura 502. Megamoera 53. Megamyrmecium 96. Meganeura n. 203. Meganostoma 494, 495, 507, 508. Megapenthes 279. Megapodagrion n. 179. Megaproctus 300. Megaprosopus 438. Megaptilus n. 181. Megarrhina 423. Megasecopterida n. 180, 181. Megasoma 482, 518. Megathentomon 179, 180. Megathentomum 203. Megerlea 438, 439. Megilla 337, 338, 553. Megisba 506. Megistanis 503. Megistocera 424. Megistogaster 438, Zool. Jahresbericht. 1885. H. Megistopoda 441." Megistops 330, 332. Megistopus 190. Megnin, P. 67, 74, 165. Megninia 85, 86.J Megopis 317. Meigenia 440. Meilichius 337. Meinert, Fr. 117. Melaleucus 298, 306. Melambia 264. Melambius 291. Melameridae 496, 514. Melampsalta 393. Melanargia 485, 490, 500. Melanearabus 242. Melanchroia 496, 514, Melandiscus 384. ^Nlelandryidae 294, Melania 439. Melanippe 481, 487. Melanitis 480, 491,499, 500. Melanius 238. Melanocoryphus 382-384. Melanodema 380. Melanolophus 291. Melaiiomyia 438, 439. Melanophila 277, 551. Melanophora 43S, 439. ^lelanophthalma 268. Melanoplus 198, 549. Melanospilus 382, 384. Melanostola 430. Melanostoma 429, 431. Melanostominae 430. Melanota 438, 439. Melanotelus n. 382, 384. Melanothus 277. Melanotus 552. Melanoxanthus 277. Melanterius 299, 306. Melanthia 484, 530. Melantho 279. Melasoma 329. Meldola, R. 459. Meldrum, F. 459. Meleus 299. Melicj'mnis n. 96. Melieria 435. Meligethes 262, 263. Melina 328. Melinaea 478, 495, 497- 499. Melinda437. Melinesthes 274, 276. Melinophora n. n. 328. Melipotis 522, 523. Melissoblaptes 486, 536. Melissoptila n. 365. Melita 53. Melitaea 475, 476, 480, 481, 487, 490, 495, 503, 505. Melithreptus 429-431. Melitobiae n. n. 441. Melitomyia n. 441. Melitta 365. Melittia 482, 512. Meloe 295. Meloetyphlus 295. Meloidae 295. Hella 536. Melolontha 133, 272, 273, 547, 548, 552. Melolonthini 272, Melophagus 414, 441, Melphidippa 53. Melyrini 285. Membracidae 379, 392. Membracis 392, 401. Menault, E. 543. Menemerus 98-100. Meneris 503. Menigrates 53, 54. Mennis 496, 515. Menognatha 140, 141. Menopon 401, 403-405. Menorhyncha 140, 141. Meracantha 552. Merapioidus 430, 431. Mercanti, Ferruccio 12. Meridogastra n. 113. Merionoeda 321, 322. Meristis 525. Merisus 350, 352. Merizodus 239, 243. Merodon 430, 431. Meromyza 413, 417, 556. Merophysia 268. Meroplus n. 297, 306. Meroscelius 321. Merostomata 64. Merothricus n. 297, 307. Merriam, C. H. 218, 459, Mesagona 486. Mesagrion n. 178, 179. Mesagroicus 298, 307. Mesapia 485. Mesembrina 437. Mesenochroa 496, 515. Mesoblattina n. 200, 201. Mesocarabus 241. Mesochorus 414. Mesodera n. 330, 332. Mesodiphlebia 535, Mesograpta 430, Mesolejus 357. Mesomphalia 336. Mesonacis n. 64. Mesoneura 348. Mesosa226, 231, 321. Mesostenus 358. Mesotype 531. Mesovelia 386. Messaras 493, 502. Messata 518. Mestleta 483, 522, 524, 525, 528. Meta 76, 77, 79, 80, 106. Metabletus 239. Metabola 141, 38 594 Register. Metacanthus 381. Metachroma 326, 328,552. Metacinops 297. Metadonus 297. Metagenesis s. Fortpflan- zung. Metagnatha 140. Metaleptus 321. Metallactulus n. n. 270. Metallites 553. Metallosetia 488, 539. Metallusn. 352, 553. ^ Metamonius n. 176, 177. Metamorphose s. Ontogene- tisches. Metanarsia 538, 540. Metanema 484, 557. Metanthia 299. Metarhyncha 140. Metasia 484, 536. Metatropis 381. Meteorus 355. Methles 245. Methoca 346. Methona 498. Metialma 299. Metoecis 535. Metoecus 295. Metopa 53, 54. ]SIetophthalmus 268. Metopia 439. Metopias 64, 255, 256. Metopiestes 265, 266. Metopioxys n. 256. Metopisena 438. Metopoctea 108. Metoponcus 247, 252. Metoponia 483. Metoponorthus 57, 58. Metriopus 289. Metrioxena 299, 307. Metrocampa 531. Metromenus 239. Meuret, E. 460. Meyrick, E. 169, 460. Mezira 385. Miamia 179, 180, 183. Miana 528. Miarus 303. Miastor 138, 416. Mibodora 514. Micaria 79, 96. Micariolepis 96. Micariosoma 96. Miccotrogus 298, 307. Micha, O. 12. Michael, A. D. 74. Michaelia n. 90. Michaelichus n. 86. Micippa 50. Miclouho-Maclay, N. de 12. Micra 528. Micracantha 316. Micralymma 247. Micraspia 337-339. Micrattacus 519', Micrinus 285. Microbela 494, 538, 540. Microcerella 437, 440. Microcerus 297, 307. Microcheles 89. Microchrysa 424, 425. Microclytus 316. Microcryptus 358. Microdeuteropus 52. Microdon 430. Microdoninae 430. Microdota 248, 252. Microdus 355. Microdynerus 364. Micro epeira 108. Microgaster 152, 354, 355. Microleon n. 520. Microlepidoptera 497. Microlomaptera n. 276. Micrommata 76, 77, 97. Micromus 185, 188, 189. Microneta 105. Microneura n. 179. Micronidae 493. Micropalpus 415, 417, 439. Micropeplidae 255. Micropeplus 255. Micropeza 433. Micropezina 433. Microphalera n. 520. Microphotus 283. Microphthalma 438. Microplax 383, 384. Microplitis 354-356. Micropterygina 486. Micropus 496, 515. Microrhopala 335. Microsaurus 254. Microspalax 86. Microstylum 428. Microtelyphonidae n. 111. Microtia 496, 502. Microtoma 382-384. Microtomideus n. 382, 384. Microtyphlus 243. Microv'elia 386. Microvonus n. 265, 266. Micrurula 262, 263. Micryphantes 553, 555, 559. Micryphantidae 93, 103. Midea92, 491, 494, 507. Miers, E. J. 12. Migadops 239, 240. Migneauxia 268. Mik, Jos. 218, 408. Mikia n. 440. Milaris 291. Milesia430, 431. Milesinae 431. Militogramma 439. Miller, H. jun. 460. Milliere, P. 460. Millot, Ch. 460. Milne-Edwards, A. 12. Miltia 96. Miltochrista 515. Mimaeseoptilus 485, 490, 541. Mimela 139. Mimenodes 267. Mimesa 346. Mimicry s. Sympathische Färbung. Mimolaia n. 318, 321. Mimonectes n. 30, 54. Minä-Palumbo, F. 74. Mingazzini, P. 218. Minicia 103. Minniza80, 109, 110. Minot, Ch. Sedgw.,& Edward Burgess 128. Mintho 438, 439. Minucia n. n. 522, 524, 528. Minyriolus 103. Miolispa 313. Miotus n. 299, 307. Mirax 356. Miresa 520. Miris 389. Mirosternus 287, 288. Mirulus 269. Mirus 256. Misantlius n. 247, '252. Miscelus 243. Miscus 361. Mißbildungen s. Abnormi- täten. Misumena 77, 78. Mitchell, A. T. 460. Mitopus 109. Mitys n. 289, 292. Mixis 285. Mixotermes 179. Mnemachinae 299, Mochlonyx 423. Mocsäry, S. 343. Modiolicola 38. Moera 53, 54. Moffat, Alstou F. 218. Moffat, J. A. 169, 460. Mogannia 393. Mogisoplistus 199, 200. Mogrus98,100. Mohnike, O. 460. Moina23, 31, 40,41. Moleyre, L. 12, 460, 543. Molippa 519. Molopsida 243. Molorchus 320. Molybdantha 534, 535. Molybdotus 307. Molytes 296. Molytinae 299. Moma490, 521. Monaeses 97. Monanthia 384, 385. Monanus 267. Monecphora 393. Mongoma 423. Register. 595 Monilema3J5, 316,321. Monista 248. Monocesta 550. Monochirus 334. Monocoryna n. 337. Monocrepidius 279. Monoculodes 53, 54. Monodontomerus 346. Moiiohammus 315, 316, 321, 551, 552. Monolepta 330. Mononychus 298. Monophadnus 347. Monospilus 41. Monostira 384. Monotoma 267. Monotomidae 267. Monotopium 267. Monstrositäten s. Abnormi- täten. Montandon, A. L. 272. Monticelli, F. S. 12. Moore, F. 460. Morawitz, Ferd. 343. Mordella 295. Mordellidae 295. Morgan, C. F. 372. Moriere, M. 12. Morimus 547. Morinia 438, 439, 556. Morio 237. Mormidea 379. Mormo 525. Mormosintes 299, 307. Morphidae 492, 493. Morphina 492, 497, 501. Morphocarabus 241, Morphomyia 439. Morton, J. Kennethl69, 170. Morychastes n. 269. Mosada 515. Mosara 522, 523. Möschler, H. B. 460. Mosley, S. L. 461. Mühlberg, F., & A. Kraft 372. Mühlwenzel, . . . 461. Mulasis 279. Mulio 414, 417. Müller, Clemens 218. Müller, Fritz 128, 408. Munida 33, 48. Munidopsis 48. Mund, Mundwerkzeuge s. Verdauungssytem. Munnopsidae 56. Murcia 90. Murdoch, John 12. Murgantia 379, 548, 555, 556, Mursia 49. Musama 424. Musca2, 4,5, 131, 132, 135, 149, 153, 158-161, 411, 413, 417, 432, 437, 547. Muscidae 161, 415, 432. Muscidora 321. Muscina 437. Musicoderus n. 247, 252. Muskelsystem. Aspidiotus 155 — Hala- rachne 69 — Limulus 6 — Macrotoma 142, 143 — Psyllidae 153-155 — Scor- pionidae 6 — Trichodacty- lus 69. Ansatz an dieHypodermis 2, 6 — Antennen Apis 148 — Blutmembran Copepoda 22 — Darm Decapoda 26, Hexapoda 133, Mallo- phaga 157 — Duftpinsel Acherontia 163 — Ejacula- tionsapparat Cypridae 22 — Einfluß von Pyrethrum- öl auf vivipare Muscidae 133 — Flugmuskeln Hexa- poda 133 — Genitalorgane Aphidae 156, Diptera 137, Ursprung aus einer Mus- kelfaser Hexapoda 135, Legröhrenborsten Lepido- ptera 163 — Glycogen Astacus 7 — Herz Onto- genetisches Apis 151 — Histologisches Tracheata 66 — Histolyse Museal 59, 160 — Leuchtkörper Eu- phausia 25 — Meso- und Metaphragma sind Sehnen Hexapoda 140 — Mund- theile Lepidoptera 162 — Ontogenetisches Cyclops 20, Gryllotalpa 146, 147, Limulus 62 — Regenera- tion Musca 160 — Schlund Epeira 68 — Sinnesorgane an den Beinen Peripatus 65 — Taster (5 Segestria 68 — Tracheenkiemen con- tractile Fasern Diptera 159 — Verhalten bei der Flügelverdrehung Musca 133, bei der Metamor- phose Trichodactylus 71 — Zell- und Kerntheilung Arthropoda 2. Mutch, J. B. 461. Mutilla346, 360. Myana 528. Myathropa430. Mycalesis 480, 491,493, 499, 500. Mycetina 337. Mycetophagidae 268. Mycetophagus 268. Mycetophila421. Mycetophilidae 420, 421. Mycetoporus 252. Mycterodus 394. Mycterus 228. Myctides 299, 307. Mydaidae 161, 427. Mydas 416, 427. Mydrodoxa 493, 513. Myelois 484, 48S, 533-535, 559. Mygale 68, 94. Myiathropa 430. Myicola n. 38. Myiodactylus 185. Myiolepta 430, 431. Mylabris 295, 296, 314. Mylacris 141. Mylacus297, 307. Myllaena 248, 252. Myllocerus 298, 307. Mylops 292, 294. Mylothris 507. Mynes 503, 505. Myobia 415, 438. Myocera 438, 439. Myoderma 274, 276. Myopa 432. Myophora 437. Myophthiria 441. Myopidae 432. Myopinae 432. Myorhina 437. Myostoma 438, 439. Myrabolia 267. Myrapetra 363. Myrina 506. Myriopoda. Anatomie, Ontogenie etc. 2, 5, 7, 71, 115-116 — Biologie, Zucht etc. 117 — Faunistik 118-125 — Literatur 115-117 — Pa- läontologie 124, 125 — Systematisches 119-125. Myriostephes 537. Myriotis n. 537. Myrmecaelurusl84, 185, 190. Myrmecobius 257. Myrmecocystus 549, 554. Myrmecomimus 388. Myrmecophila 194, 199, 200. Myrmecoxenia n. 248, 252. Myrmedobia 387. Myrmedonia 248, 252. Myrmeleon 184, 185, 190. Myrmeleontidael83-185,190, 411. Myrmetes 259. Myrmica 346. Myrmolamia n. 316, 321. Myscelia 502. Mysia 337. Mysidae 43, 44. Mysidea 16, 17. Mysideis 44. Mysidella 44. Mysidopsis 43, 44. Mysis 18, 24, 31, 44. Mystacides 187. 38* 596 Reorister. Mytilaspis 4ü0, 547, 554. Mj-xosargus 425. Mvzoxylus 548. Mvzus 396. Nabartha n. 528. Nabis 386, 414. Nacaduba 506. Nacoleia 534, 537. Nadata 495, 520. Nadisepa 506. Naenia 53, 525. Nagadeba 522. Nahara 524. Nahrungsaufnahme, Nah- rungserwerb s.Biologisches. Nalassus 289. Nalepa, Alfr. 67, 74. Nannocerus n. 352. Nannoniscus 56. Nanophyes 303, 307, 310. Napeocl'es 502. Napeogenes 495, 496, 498, 499. Napochus 257. Naponiyza 435. Narathura 505, 506, Narcodes 256. Nash, W. G. 461. Nassonow, N. 12. Nastus 307. Natada 520. Nathalis 495, 507. Naucoridae 389. Nauphaeus 299. Nauplius s. Ontogenetisches. Naupoda 432. Nausibius 264, 267. Nausigaster 430. Nautilograpsus 51. Naxia 522, 526, 527. Neaera 100. Neaethan. 98, 100, 101. Neasellus n. 56. Nebalia 15-17, 23, 43, 58. Nebaliidae 43. Nebaliopsis n. 43. Nebria 239, 243. Nechyrus 299, 307. Necröbia 287. Necrodes 257. Necrophilus 257. Necrophoridae 549. Necrophorus 257, 258. Neda 338. Nedyus 298, 307. Neera 100. Neervoort van de PoU, J. R. H. 218. Negritomyia 424, 425, Neliocarus 29S, 311. Nelo496, 514, 515. Nemadus 257. Nemastoma 108. Nemastomidae 108, Nematocarcinus 46. Nematogmus 103. Nematois 163, 539, 540. Nematoscelis 25, 43, 44, 56. Nematus 347, 348, 415, 547, 548, 553, 554. Nemeobiidae 493. Nemeobius 485. Nemeophila 477, 495, 516, 517. Nemesia 78, 93. Nemesis 39. Nemopoda 434. Nemoptera 185, 189. Nemopteridae 185, 189. Nemorea415, 417, 439, Nemorhina 437. Nemosoma 264. Nemotelus 424. Nemoura 183. Neobule 53. Neocheritra n. 491, 505, 506. Neoclytus 321, 323, 550. Neoexaireta 425. Neolamprima 270. Neolucanus 270. Neomyrina 505. Neon 98. Neoneura 178. Neonympha 481. Neorthroblattina n. 201. Neopallodes n. 262, 263. Neophasia 507. Neopithecops 506, Neoplatus 265. Neoplectes n. n. 241, 243. Neoplotera 268. Neopraea n. 332. Neosatyrus 496, 500. Neoscorpii 114. Neotrichus n, 265, 266. Neotropidae n. 475, 497, 498. Neottiglossa 379, 380. Neozetes n. 89-91, Nepa 4, 134, 135, 555, Nepachys 285. Nephalius 321. Nephele 511. Nephelodes 528. Nepheronia 507, 508. Nephila 106, 108. Nephilengys 80, 106. Nephius n! 300, 307. Nephopteryx 523, 533, 535, 557. Nephrops 47. Nephropsis 47. Nephus 33S. Nepidae 389. Nepticula 485, 486, 539-541. Neptis 491, 502, 503, 505. Neren, C. H. 461. Nerice 518. Neriene 77, 103. Neriu.s 432, 433. Nerua 425. Nervensystem. Aspidiotus 155 — Cher- metidae 156 — Coccidae 156 — Geometridae 162 — Hexapoda 140 — Ma- crotoma 143 — Mallopha- ga 158 — Peltogaster 19 — Phylloxera 152 — Psyl- lidae 153 — Schizopoda 24 — Serolis 30 — Sphae- rotherium 115 — Tricho- dactylus 69. Auge nervöse Apparate Ar- thropoda 3, 4, Ontogene- tisches Hymenoptera 3, Ganglion opticum Aesch- na 144, Nebenaugen Eu- phausia 25 — Centrales Apus, Limenitis und De- capoda 23, Gehirn Edri- ophthalmata 18 — Chor- dotonalorgane der Extre- mitäten Arachnidae 68 — Geschmacksorgane Hyme- noptera 130, Ontogeneti- sches Apis 150, Atvephy- ra 28, Cyclops 20, 21, Gryllotalpa 145, 146, Li- mulus 62, 63, Peripatus 66 — Sinnesorgane an den Extremitäten Halarachne 69, Peripatus 65 —Speichel- drüsen Hexapoda 131 — Unterkieferpapille Formica 148. Nesaea 92. Nessiara 313. Nestbau s. Biologisches. Nesticus 105. Nesydrion 185, 189. Neumoegen, B. 461. Neuraphes 256, 257. Neuria 428. Neurigona 429. Neurocladus 383. Neurolestes 178, 179. Neuronia 181. Neuroptera. Anatomie, Ontogenie etc. 145 — Biologie, Jugend- formen etc. 184, 185 — Faunistik 185-191 —Li- teratur 167-171 — Palä- ontologie 190, J 91 — Scha- den, Nutzen, Vertilgungs- mittel, Pflege 549 — Sy- stematisches 186-191. Neuropteroidea 141. Neurorthoptera 179, ISO, 203. Neurosigma 502. Neuroterus 350. Neviasca 524. Kegister. 597 Nezara 379, 380. Niaccaba 533, 537. Nica 502. Nicaea 19. Nicaeana 307. Nicea 437. Niceville, L. de 461. Niceville, L. de, &W. L. Di- stant 4(jl . Nicholson, W. E. 461. Nicoletiella 89. Nicotheus 256. Niere s. Excretionsorgane. Nika 46. Nilasera 506. Ninni, A. P. 12. Niphades 299. Niphargus 30, 31, 53. Niphopelta 264. Niponius n. 260, 261. Nirmus 401-403. Niseida n. 299, 307. Nisitrus 200. Nisoniades 481. Nisotra 330, 332. Nistra 533. Nitela361. Nitidula 262, 263, 552. Nitidulidae 262, 551. Nitidulopsis 263. Nitsche, H. 543. Nitzschia 403. Nixon, J. J. 461. Noctua4, 415, 477,487,521, 523-525, 528. Noctuelia 534. Noctuidae 474, 475, 479, 483, 486, 487, 489-494, 497, 511, 522. Noctuina 522. Noctuophalaenidae 522. Noda 328. Nodaria 528. Nodina 328. Nodonota n. n. 328. Nodostoma 326, 328. Nogagus 39. Nola495, 496,515. Nolasena 523. Neil, F. C. 12. Nomada 346, 365. Noinenclatorisches. Coleoptera 225 — Lepidop- tera474 — Schizopoda 43. Dichoptisch : holoptisch Diptera 410 — Extremi- täten Crustacea 15, Meta- zoea u. Pseudozoea 28 — Flugapparat Hexapoda 1 33 — Heterotrophie Bombus 148 — Megalophthalmie Gammarus 29 — Organi- sche Axe des Eies Orthop- tera 147. Nomophila 477. Nonianus n. 98. Noorda 535. Nördlinger, H. 543. Nordquist, Ose. 12. Norellia 432. Norris, H. E. 372, 461. Nosidium 259. Nosodes 264. Notacantha 424. Notaphus 238, 240. Notaspis 90. Notaris 307. Nothochrysa 189. Nothris 539. Nothrus 89, 90. Notibius 289, 292. Notiophilus 238, 239. Notiphila 432, 433. Notiphilides 123. Nötling, Fritz 13. Notochilus 383. Notodelphyidae 38. Notodelphys 38. Notodonta 477, 479, 495, 520, 558. Notodontidae 482, 489, 490, 492-494, 520. Notodontina 520. Notodromas 21, 22, 40. Notonecta 134. Notonectidae 390. Notophryxus 56. Notospila 432. Notostomus 45. Notoxus 295. Notozona 330, 332. Notus 390, 391. Novius 338, 339. Nowers, J. E. 461. Nudaria 515. Nudobius 247, 252. Numeria 531, 532. Nuptis 289, 292. Nutzen und Schaden. [Aptera] — Arachnidae 78 — Coleoptera 226, 551 • — Crustacea 34 — Dip- tera 413, 556 — Hemiptera 375, 554 — Hymenoptera 345,553 — Lepidoptera474, 557 — [Mallophaga] — Neuroptera 549 — Orthop - tera 194, 549 — Pseudo- neuroptera 549 — [Strep- siptera] — Thysanoptera 550. Hexapoda 540, für den Forst 545, Landwirth- schaft547, Obstbäume 547, Weinbau 546 — Medicini- sche iVnwendung Cetonia 225 — Schalen als Hygro- meter Lithodes 29. Nychthemera 513, 514. Nychthemeridae 513. Nyetalemon 478. Nyctalemonidae 494. Nyctarcha 494, 534. Nyctelia 235. Nyctemeridae 492, 493. Nyctemerina 516. Nycteribia441. Nycteribiae n. n. 441. Nycteribiina 441. Nycterobius 474. Nyctia 438, 439. Nyctipao 522, 524, 525. Nyctiphanes 25, 43, 44. Nyetobates 289, 291, 292, 552. Nyctochroa 496. Nyctocrepis 283. Nyctophila n. 280, 281, 283. Nymphalidae 485, 4S7, 493, 494, 497. Nymphalina 497. Nymphalinae 481, 491, 492, 501. Nymphalis 491, 503. Nymphe s. Ontogenetisches. Nymphes 185, 189. Nymphidae 185, 189. Nymphini 183. Nymphon 7, 8. Nymphonidae 8. Nymphopsis n. 8. Nymphula 534. Nysius 383, 384, 548. Nyssodrys 321, 322. Nyxeophilus n. 358. Obelistes n. 328. Oberea 551. Obereina n. 321, 322. Oberthür, Charles 218, 461. Obisiidae 110. Obisium 78, 109, 110. Obrium 321. Ocalea 246, 248, 252. Ochetostethus380. Ochresthes322. Ochrilidia 197. Ochromyia 432. Ochronanus n. 300, 307. Ochropleurum 438. Ochsenheimeria 485, 488, 559. Ochthebius 246. Ochthiphilina 435. Ochyrotylus n. 380, 381. Oeneria 482, 487, 517, 518. Oenerodes 198. Ocnida n. n. 328. Ocnogyna 490, 517. Ocnus 328. Octhispa334, 335. Octoglena 121. Octoplon 322. Ocyale 77, 102. 598 Kegister. Ocypoda 51. Ocypodidae 51. Ocyptamus 430, 431. Ocyptera 44u. Ocypterina 440. Ocvpterum 441. Ocvstola n. 494, 538, 540. Odoacis 299. Odezia 489, 531. Odoiporus 297, 307. Odonata 141, 171, 177, 180, 183. Odonestis 476. Odontionopa 328. Odontocera 322. Odontognathus 274. Odontolabini 269. Odontolabis 269-271. Odontolinus n. 247, 252. Odontomyia 424, 425. Odontopera531, 532. Odontoplatyx 388. Odontopus 289. Odontota 334, 335, 551. Odontotarsus 379-381. Odontria 273. Odontura 198. Odosyllis 299, 307. Odozana496, 514, 516. Odvnerus 363, 364. Oeatus n. 289, 292, 293. Oecanthus 199, 200, 549. Oecetis 187, Oecophora 539, 540. Oecophoridae 494. Oecophylla 359. Oedemasia 559. Oedematophorus 485, 496, 541. Oedemera 296. Oedemeridae 296. Oedicephalus 358. Oediceros 53. Oedichirus 248, 249, 252. Oedionychis 330, 333. Oediopalpa 335. Oedipoda 193, 197, 549. Oedipodidae 197. Oedipus 428. Oedischia n. 202. Oeketicus 477. Oeneis 479, 495, 500. Oenomia 290. Oenopion n. 289, 292. Oenotrus 496, 514, 516. Oestlund, O. W. 543. Oestridae 415, 416, 440. üestromyia 44u. Oestrus 415, 416. Oeta 539. Oiceoptoma 257. Oiketicus 520, 521. Olene 482, 517. ülfersia 441. üliarus 393, 394. Oligobiella 387, 389. Oligolophus lOS, 109. Oligoneura 423. Oligonotus n. 248, 252. Oligostigma 534, 537. Oligota 248, 252. Oligotoma 173, 175, 176, 184. Olios 97. Olisthopus 238. Olivier, A. 461. Olivier, Ernest 218. Olivieria 439. Olliff, Sidney A 218. Olophrum 246. Olotelus 294. Olpium 109, 110. Olyntha 175, 176. Olyras 495, 498. Omalia 179, 180. Omalium 246, 252. Omalocerati 420. Omalogaster 439. Omalostoma 438. Omias 298. Omicrus 245. Omma 267. Ommata 322. Ommatius 427. Ommatophora 524. Ommatophoridae 492, 493. Ommatophorina 522. Omoplata 336. Omosarotes 316. Omosita 262. Omototus 330. Omphalius 285. Omphreus 243. Oncholichas 64. Oncideres 316, 322, 550. Oncocephala 334, 335. Oncocephalus 386. Oncomyia 432. Onconotus 193. Oncoparia 60. Oncophanes 354, 355. Oncophorus n. 262, 401, 403. Oncopygius 429. Onesia 414, 435, 437. Onesimus 53. Onesorus 299. Onisci 56. Oniscidae 5, 32, 56, 58. Oniscigaster 172, 176. Oniscoidea 57. Oniscus 29, 57. Ononia n. 55. Onota 237. Onthophagus 272. Onthophilus 259-261. Onthostygnus 247, 252. Oiitogenetisches. Apis 150, 151 — Aspidio- tus 156 — Astacus 28 — Atyephyra 27 — Baianus 19 — Chironomus 137 — Cuma 23, 24 — Cyclops 19 — Daphnia 22 — Grj^- lotalpa 145-147 — He- miptera 375 — Limulus 61-64 — Macrotoma 143 — Peripatus 65, 66 — Phylloxera 157 — Serolis 30 — Sphaerogyna 71. Antennen Hexapoda 131, vordere Crustacea 15 — Auge Hymenoptera 2, 3 — Darm Apis 134, Chiro- nomus 138, Lepidoptera 134 — Dotter Natur Ar- thropoda 6, Speisung des- selben Hexapoda 134, Pseudovitellus Aspidiotus 156, Psyllidae 154 — Ei Aspidiotus 156, Bombyx 162, Chermetidae 156, He- miptera 134, 135, Psylli- dae 154, Eibildung Hexa- poda 136, Dauereier Daph- nia 22, Organische Axe Orthoptera 147, Stoffwech- sel Bombyx 163 — Em- bryo Eisothistos 30 — Embryonalhüllen Deutung Arthropoda 6 — Ento- dermbildung Thyridopte- ryx 163 — Einfluß des Lichtes und der Wärme Musca 159, des blauen Lichtes Musca 417, des Magnetismus Pieris 164, der Nahrung Hemiptera 375 — Excretionsorgane Macrotoma 142 — Flügel Hexapoda 133 — Fur- ehungszeUen Kerne Ceci- domyia 137 — Genitalor- gane Chironomus 138, Hexapoda 135-137, Psylli- dae 155,Trichodactylus 70, Chitingerüst des Ejacula- tionsapparates Cj^jridae 22, Eiröhren Hemiptera 134, 135 — Haftdrüsen Coleop- tera 132 — Histolyse u. -genese Musca 159, 160 — Jugendstadien Cantha- ris 148, Decapoda 28, Diptera416, Euphausiidae 25, Hemiptera 375, Hyme- noptera 346, Lepidoptera 480-485, Nebalia 23, Neu- ropteral84, Pseudoneurop- tera 172, Psyllidae 152, SquiUidae 59, Nauplius Estheria 23, Nauplius u. Zoea Morphologie u. Phy- logenie Crustacea 17 — Maxillentaster Persistenz Mallophaga 157 — Meta- Register. 599 morphose Aspidiotus (5 155, Coccidae 155, Co- leoptera 226, Diptera416, Myrmeleon 184, Tricho- dactylus 70 — Muscula- tur Psyllidae 153, Eja- culationsapparat Cypridae 22 — Neotenie Hexapoda 138 — Nervensystem Phyl- loxera 152, Augennerv Hymenoptera 2, Ganglion opticum Aeschna 144 — Panzer Crustacea 2 — Polzellen Chironomus 137 — E-ückenorgan Homo- logie Crustacea 18, Onto- genetisches Cyclops 21, Gryllotalpa 146 — Sperma- togenesis Arthropoda 7, Aspidiotus 155, Cypridae 21, Decapoda 27, Hexapo- da 137, Psyllidae 154. Onychogomphus 178. Onymacris n. 289, 292. Oodemas 300, 307. Oogynes 285. Oomorphus 326, 328. Oonops 94. üopsis 316. Üopterus 243. Opatrinus 289, 292. Opatrum 289, 290. Opel, F. M. E. 543. Operophthera 530. Ophideres 474, 483, 523. Ophideridae 492, 493. Ophiderina 522. Ophiderma 554. Ophiodes 483, 528. Ophioglossa 248, 252. Ophiogomphus 178. Ophion 358, 554. Ophionidae 357. Ophionyssus n. 88, 89. Ophisma 523, 524. Ophistomis 322. Ophites 248, 252. Ophiuche 523, 524. Ophiusa 522-524, 527, 528, 557. Ophiusidae 492. Ophiusina 522. Ophonus 237, 238, 244. Ophrida 333. Ophthalmicus 383. Ophthalmophora 496, 532. Ophyra 436. Opilio 109. OpiHones71, 108, 112. Opilus 287. Opisthacanthus 111. Opisthemega 121, 122. Opisthoncus 100. Opistograptis 531. Opistoplatys 386. Oplisa 438. Opomala 198. Opomalidae 198. Opomyza 433, 556. Opomyzina 433. Oporabia 478, 480, 481, 532. Opostega 489. Oppenheim, Paul 128, 461. Oppia 89, 90. Opsicoetus 386. Optis n. 266. Oraesia 528. Orbifrons 523. Orbitelariae 112. Orchelinum 549. Orchesella 166. Orchestes 307. Orchestia 29. Orchestiidae 52. Orchomene 53, 54. Orectochilus 245. Oregus 240. Oreina 329. Oreocarabus 241. Oreodera 322. Oreopsyche 489, 521. Orgilus 355. Orgyia 482, 518, 558, 559. Orgyidae 490. Oribata 91. Oribates 83, 89, 91. Oribatidae 83, 89, 546. Oricia 496. Orimargula 423. Orizabas 274. Orizia 514. Ormerod, Eleanor A. 408, 543. Ormia 437. Ormyrus 353. Ornidia 411. Ornithoica 441. Ornithomyia 415, 417, 441. Ornithophila 441. Ornithoptera 481, 492, 494, 509, 510. Ornithoscatoides 76. Ornix 486. Orobena 537. Ürobitini 298. Orobitis 298, 307. Orochlesis 299. Orocrambus n. 537. Orodemnias n. 490, 517. Oronotus 358. Orosana 534. Orpheides 481. Orphnaeus 123. Orrhodia 489, 525. Orsodacna 325. Ortalina 434. Orthaga 484, 533. Orthezia 400. Orthocephalus 388. Ortholitha 415, 531, 532. Orthomegas 316. Orthomias n. 307. Orthomus 244. Orthoneura 430, 431. Orthopelma 357. Orthoperus 258, 259. Orthophlebia 190, 191. Orthoptera. Anatomie , Ontogenie etc. 145-147 — Biologie 193, 194 — Faunistik 195-203 — Literatur 191 - 193 — Paläontologie 200-203 — Schaden , Nutzen , Vertil- gungsmittel, Pflege 549 — Systematik 196-203. Orthopteroidea 141. Orthorrhapha 417, 419, 420. Orthorrhinus 299, 307. Orthosia 489, 496, 525, 528, 558. Orthosiina 522. Orthosinus 307. Orthosoma 550-552. Orthostira 384. Orthotemnus 300, 307. Orthotylus 388, 389. Ortleb, A. & G. 461, 543. Ortswechsel s. Locomotion. Orus 247, 252. Orya 123. Orychodes 322. Oryctoblattina201. Oryotus 257, 258. Osborn, Herb. 60, 74, 203, 372, 544. Osborne, J. A. 461. Osca 534. Oscinina 433. Oscinis 413, 417, 432, 433, 548, 556. Osmia 151, 346, 364, 365, 414. Osmylidae 185, 188. Osmylini 183. Osmylus 185. Osoraria n. 248. Osorius 248, 252. Osphilia 299, 308. Osphranticum 38. Osten-Sacken , C. B, von der 192, 408. Ostracoda 15, 18, 21, 31,39, 58, 59. Ostrinis 534. Oteroscelis 289, 290. Othiaria n. 248. Othippia 299, 308. Othius 247, 252. Othora 523, 528. Othreis 483, 522, 523. Otiocephala 325. Otiocerus 554. Otiorrhynchus296, 298, 308, 311, 552. 600 Keffister. Otitesella 353. Otostigma n. 121, 122. Otostigmus 122. Ottistira 299, 308. Ottonia 93. Ourachaerus 57. Oustaletia n. 86, 87, 182. Ovarium s. Genitalorgane. Oxathres 322. Oxoplus 316. 322. Oxya 198. Oxycareniis 383. Oxycephala 334, 335. Oxycera 424. Oxychirota n. 537. Oxychirotidae 494. Oxycoleus 322. Oxycorynae 299. Oxycypha 177. Oxydema 300, 308. Oxydesmus 120. Oxydexia n. 437, 439. Oxygona 330, 333. Oxylaemus 264. OxyleiDus n. 336. Oxylymma 316, 322. Oxymirus 316. Oxynia n. 299, 308. Oxynopterus 279. Oxyodes 522, 523. Oxyopes 77, 103, 559. Oxyopidae 93, 103. Oxyphora 434. Oxvpleurodon n. 50. Oxypoda 247, 252. Oxyporus 252. Oxypteron 484, 538. Oxyptila 79, 97. Oxyptilus 558. Oxyrrhachis 392. Oxyrrhynehus 303. Oxytelaria n. 248. Oxvtelini 248. Oxytelus 248, 251, 253. Oxytheeta n. 494, 538-540. Oxythespis 196. Oxyurus 120. Ozarba 528. Ozineus n. 322. Pachama 500. Pachnobia 488, 525. Pachnoda 274, 276. Pachybrachys 325. Pachycerus 308. Pachycorynus 248. Pachycraerus 260, 261. Pachycranion 241. Pachygaster 424. Pachygastrina 424. Pachygnatha 106. Pachygnathidae 106. Pachygrapsus 19, 25, 51. Pachylobius 551. Pachylomerus 78, 93, 94. Pachylon n. 266. Pachylopus 261. Pachymerus 314, 315, 382- 384. Pachyops 300, 308. Pachypus 273. Pachyrrhina 423, 424. Pachyrrhinus 308. Pachyrrhynchus 299. Pachystus 241. Pachyta 316, 322. Pachyteles 244. Pachytelia 520. Pachytrachelus 199. Pachytychius 299, 301, 308. Pachytylopsis 179, 180. Pachytylus 194, 197, 414, 548, 549. Pachyzancla 533, 534. Packard, A. S. 13, 60, 128, 170, 192, 218, 461, 544. Pactopus 279. Pademma 478, 497, Padoxenus 328. Paederallus n. 247, 253. Paederini 247, 248. Paederomimus n. 247, 253. Paederus 246, 248, 249, 253. Paedisca 484, 488, 538. Paedogenesis s. Fortpflan- zung. Paeocera 401. Paepalophorus 299. Paepalosomus 299, 308. Pagellia n. 328. Pagenstecher, A. 462. Pagocolon 511. Paguridae 49. Paguristes 25, 26. Pagurus 27, 49, 60. Paidia 364. Palaeacridiodea n. 200, 202. Palaemon 18, 28, 46. Palaemonetes 16, 46. Palaeoblattariae 179, 401. Palaeoblattina 200, 201. Palaeocampa 190. Palaeocaris 59. Palaeocarpilius 59. Palaeocixius 401. Palaeocossus n. 541. Palaeodictyopteran. 179-181 , 202. Paläontologisches. Aptera (Thysanura) 166, 1 67 — Araclinidae 112-115 — Coleoptera 339 — Cru- stacea 58-60 — Diptera 442 — Hemiptera 400, 401 — Hymenoptera 367 — Lepi- doptera 164, 541 — Myrio- poda 124, 125 — Neurop- tera 190, 191 — Orthoptera 200-203 — Poecilopoda 64 — Pseudoneuroptera 179- 184 — Trilobitae 64. Palaeophonidae n. 114. Palaeophonus 113, 114. Palaeopterina 179, 181. Palaeothona n. 330, 333. Palaminus 248, 253. Palamnaeus 414. Palephemera 179. Palephemeridae 179. Pales 327. Palingenia 179, ISO-, Palinurellus 48. Palinuridae 47. Palinurina 59. Palinurus 25-27, 48. Palla 503. Pallasea 31. Pallene 7, 8. Pallenidae 8. Pallodes 262, 264. Palmer, E. G. W. 462. Palpares 190. Palpimanidae 95. Palpimanus 95. Palpople ura 172. Palyadae 493. Pambolus 356. Pamborus 244. Pamphagidae 198. Pamphagus 198. Pamphila 491, 494, 495, 510, 511. Pamphilius 347. Panacra 482. Panagra 530. Panamomops 103. Pancalia 539. Panchala 505-507. Pancritius, Paul 128. Pandalus 45, 46. Pandarinus 292. Pandeletius 550. Pandemis 559. Pandesma 522, 525, 528. Pandinidae 111. Pandita 502. Panemeria 525. Pangonia 426. Pangoniina 426. Pangus 244. Panillan. 522, 528. Pannycliis 322. Panoethia 478. Panolis415, 525. Panorpal33, 185, 187. Panorpatae 141. Panorpidae 183. Panorpidium 184. Panorpina 187. Panthea490, 521. Panthophyrtus 238. Pantiala n. 299, 308. Pantopoda 7-8. Pantoxystus 299. llegister. 601 Pantura n. 523, 528. Panzeria 438, 439. Paophila 525. Papilio 474, 475, 477-481, 487, 488, 490-496, 500, 503, 509, 510, 558. Papilionidae 481 , 485 , 487, 489-493, 497, 507. Papilioninae 475, 491-493, 509. Papirius 165. Parachalepus n. 334, 335. Parachortophila 436. Paracyclois n. 49. Paradamoetas n. 100. Paradesmus 120. Paradiaphorus n. 297, 308. Paradoxides 64. Paradoxostoma 40, 59, 60. Paragnatha 15. Paragus 430. Parahelops 292. Paraiulus 119. Paralges n. 86. Paralimna 432. Parallelispa n. 335. Paramarygmus n. 289, 292. Paramecosoma 268. Parametopia n. 262, 264. Paramicippa 50. Paramphithoe 53. Paranaenia 54. Parandra 315, 316, 322. Paranthura 54, 55. Parapenaeus n. 46. Paraphia 484, 557, 558. Paraphylax 290. Parapolycrates n. 384. Paraponyx 484, 535-537. Parapsammophila 361. Parapteris 356. Pararga 479, 500. Parasa 483. Parasia 540. Parasilis n. 284. Parasilpha 257. Parasita 378. Parasiten, Parasitismus s. Biocönotisches. Parasphex 361. Parastasia 276. Parastemma n. 422. Parastetha 333. Paratanais 54. Parathemisto 54. Paratinia 422. Pardalesdes 510. Pardalisca 53. Pardosa 102. Parectopa 557. Parerythrops 43, 44. Parfitt, E. 372, 462. Paria 552, 553. Parmena316, 322, 547. Parmenonta 322. Parnassius 481, 489, 490, 509, 510. Parnidae 269. Parnus 269. Paromalus 226, 259, 261. Paromius 383. Paromylacris n. 201. Parona, Corrado 165. Parorgyia 558. Parotermes 183. Parthenogenesis s. Fort- pflanzung. Parthenopidae 50. Parthenos 502, 523. Parysatis 322. Pascoe, Francis P. 219. Pasipeda 483, 524, 528. Pasiphila 530. Pasira 386, 528. Pasites 364. Pasithea 529, 530. Pasquali, G. 128. Passalidae 271. Passalus 271. Passandra 267. Passerini, N. 128, 192, 462. Paszlavskv, Jozsef 219, 343. Pathodermus 264, 266. Pathologisches. Apis 345 — ■ Seuchen Asta- cus 28, 29. Patrobus 238, 239. Patroclus 358. Patula 522, 524, 525. Pauropoda 71, 118, 119, 124. Pauropodidae 119. Pauropus 112, 119. Paussidae 256. Paussus 256. Paux, . . . 462. Pavesi, Pietro 74. Paykullia 439. Peach, B. N. 74. Pearce, S. A. 462. Pearce, W. A. 462. Pechipogon 524. Peckham, G. W. & E. G. 74. Peckia 437. Pedanostethus 105. Pedicia 423. Pedicinus 400. Pediculidae 152, 400, 549. Pediculus 400. Pedilidae 294. Pedinaspis 362. Pedionomus 289. Pediopsis 391. Pedipalpi71, 111-112. Pedius 238, 244. Pedonoeces 289. Pedoptilan. 491, 513. Pedrillia 324, 325. Pedunculus s. Stamm. Pegler, S. 462. Pegomyia 436. Pelania 280-281, 283. Pelargoderus 322. Pelastoneurus 429. Pelecocera 429-431. Pelecodon 94. Pelecyntis 533, 534, 537. Peletaria 439. Pelidnoptera 440. Pelidnota 273. Pelinobius n. 94. Pellenes98, 99-100, 101. Pellonia529, 531. Pelochrus 285. Pelonomus 308. Pelophila 237. Pelopoeus 346, 361, 363. Pelops 89. Pelseneer, Paul 13, 67. Peltastica 264. Peltidium 37. Peltinus 259. Peltis 257, 264. Peltodytes 245. Peltogaster 19. Peltogastridae 36. Peltoides 289. Peltonotus 393. Pempelia 484, 488, 535, 537, 557, 559. Pemphigina 395. Pemphigus 395, 554. Pempteurys n. 322. Pendragon n. 308. Peneidae 16, 25. Penessada 316, 322. Peneus 15. Penichrus n. 289, 292. Penicillaria 483. Penium 430. Pensacola n. 100. Pentarthrum 298, 300, Pentastomidae 82. Pentastomum 82. Pentatoma 381. Pentatomidae 378, 379. Penthea 316. Penthema 502. Penthetria 422. Penthicus 292. Penthimia 390, 391. Penthina 478, 488, 538. Pentila 506. Pentodon 274. Pentomus 45. Peponocranium 103. Pepsis 361-363. Peracca, M. H. 462. Peragallo, A. 544. Percus 238. Peregea 528. Pereute 507. Perez, J. 343. Pergesa 482. Peria 502. Peribalus 379, 380. 602 Register. Periboeum 321-323. Pericallia 4S9, 516, 531. Pericardium s. Leibeshöhle. Perichilus n. 289, 292. Pericopina 516. Pericopis 496, 516, 517. Pericyma 483. Periergates 322. PerUampus 353. Perilypa 534. Perimylops n. 292. Perina 478, 482, 517. Perineura 348. Peripatus 2, 3, 5, 61, 65-67. Periplaneta 4, 5, 131, 145, 196. Perisama 502. Perissops 299. Peristicta 178. Peritelus 308. Peritrechus 382-384. Perkins, V. 343. Perla 176, 181. Perlariae 141. Perlidae 171, 173, 176, 179. Perlina 183. Peronea 484. Perrhaebius 299, 308. Perrhybris 507. Perroncito, E. 408. Perthosoma 389. Pertinax 271. Pescolinus n. 247, 253. Petalocephala 390. Petalodes 356. Petalophthalmus 43, 44. Petalopus 17. Petanoptera 141. Petaserpes 121. Petrablattina 201. Petrejus 271. Petricskö, Jenö 219. Petroblattina 183. Petrophilus 244. Petrophora 558. Peryscyphis 57. Pezomachus 79, 357. Pezotettix 198, 549. Phacephorus 308. Phacobius 247. Pharus 338, 339. Pfeffer, Georg 13. Phaea 322. Phaedinus 322. Phaedon 329. Phaedra 328. Phaedrias n. n. 328. Phaedroides n. 328. Phaenolis 281, 283. Phaenomerus 300. 308. Phaenopyrus n. 283. Phaeochlaena 496, 497, 529. Phaeochrous 272. Phaeogenes 358. Phaeomyia 440. Phaganophaua 257. Phalacridae 262. Phalaena516, 523, 524, 531, 534. Phalangiidae 108. Phalangium 78, 80, 108, 109. Phalangodes 109. Phalangodidae 109. Phalantha 337. Phalcidon 496. Phalcidona 496, 514. Phalera 482, 520. Phaleria 292. Phaleridae 520. Phaloe 496, 517. Phalops 272. Phanaeus 27 1 . Phaneroptera 198. Phaneropteridae 198. Phanerotoma 356. Phanomeris 354, 355. Phaolus 322. Phascus 328. Phasgonophora 353. Phasia 440. Phasiane 533. Phasina 420, 440. Phasmidael41,196, 197, 200, 202. Phassus496, 521. Phelister 259, 261. Phellopsis 552. Phengodes 283, 284. Pheosia 558. Pherusa 53, 54. Phibalapterys 487, 530. Phidippus 100. Phigalia 476, 533. Philaenus 393. Philaeus 98, 100. Philagathes 319. Philampelus 511. Phüenora n. 516. Philerema 531. Phileremidae 364. Philer emus 364. Philhydrus 246. Philichthys 39. Philobota 539, 540. Philochlaenia 273. Philocompus 432. Philodromus 80, 97. Philolutra 429. Philomedes 39. Philona 514. Philonthus 246-250,253, 254. Philopotamus IST. Philopteridae 157, 401. Philoscia 57. Philothermus 264-266. Philotrypesis 350-353, 358. Philougria 58. Phlaeodes 484. Phlegethontius 511. Phlegon 279. Phlegra 98-100. Phlepsius 390. Phloeoba 197. Phloeophagosoma 300. Phloeophagus 298, 308, 309. Phloeopora 248. Phloeopterus 254. Phloeosinus 552. Phloeosoma 264. Phloeothrips 204. Phloeotrya 294. Phloiotribus 550. Phoberus 47. Phobetrum 557. 558. Pholcidae 104. Pholcomma 105. Pholcus 77, 104, 105. Pholicodes 298, 308. Pholisora 481. Phora 429. Phoracantha 316. Phorbia 436. Phorella 437. Phoridae 419, 429. Phormesium 316, 320. Phorocera 440. Phorodesma 484, 529, 530. Phorodon 395, 399, 547, Phorostoma 438, 439. Phosphaeniui 280. Phosphaenopterus 280, 281. Phosphaenus 280, 281, 283. Phosphorescenz s. Leuchten. Phosphuga 257. Photinus 281, 283. Photuris 281, 283. Phoxichilidae 8. Phoxichilidium 7,8. Phoxopteryx 486. Phoxus 53. Phragmatoecia 520. Phragmatoecites n. 541. Phraotes n. 299, 308. Phratora 547. Phricodina 520. Phronia 421. Phronima 2, 19, 27, 29. Phronimidae 3, 15. Phrydiuehus n. 308. Phryganea 158. Phryganeidae 183, 186, 557, Phryganidium 190, 191. Phryganopteryx n. 517. Phryneta 316, 322. Phrynidae 111. Phrynidius 322. Phrynocolus 292. Phrynoides n. 297, 308. Phryssogonus 531. Phryssonotus u. 125. Phryssopoda 437. Phryxus 56. Phthanocoris 142, 401. Phthirius 400. Phthoroblastis 484, 538. Register. 603 Phulia 495, 507. Phyale 9S. Phyeidae 491. Phyeididae 494. Phyciodes 478, 496,497,502, 503, 505. Phycita 535. Phycitidae 484, 486. Phycus 427. Phvgadeuon 357, 358. Phvlaitis 299, 308. Phyllechthrus 333. Phyllerythrurus n. 308. Phyllobius 308, 553. Phyllobotrica 333. Phyllocaridae 23. Phyllocharis n. 329, 507, 509. Phyllocnistis 485, 557. Phyllocrania 194. Phyllodes 522. Phyllodidae 492. Phvllodromia 196. Phyllopertha 273, 274. Phyllopetalia 178. Phyllophaga 547. Phyllophora 424. Phyllopoda 15, 18, 23, 52. Phyllosomata 59. Phyllotreta 330, 333, 547, 548, 552-554. Phylloxera 152, 156, 157, 166, 171, 398, 546, 554, 555. Phylloxerina 395. Phylogeuetisches. Arachnidae 71 — Arthro- poda 5 — Cladocera 22 — Crustacea 18 — Diptera 161 — Hemiptera 155 — Hexapoda 139-142 — Hy- menoptera 1 49 — Leander 28 — Lepidoptera 164 — — Limulus 63, 64 — My- riopoda 71, 116, 124, 140 — Nebalia 23 — Peltoga- ster 19 • — Planocephalus 141 — Siphonaptera (Apha- niptera) 161 — Telpnusa 28 — TrUobitae 63, 64. Augen Arthropoda 3 — Atavismus bei Kreuzung Bombyx 164 — Chloro- u. Xanthophylle Raupen 139 — Extremitäten Crustacea 15, Cyclops 21 — Farbe Decapoda 28 — Flügel Hexapoda 133 — Fossiles Auftreten Hexapoda 141 — Gehirn Phyllopoda 23 — Haftdrüsen Coleoptera 132 — Herz Calanidae 22 — Lunge Scorpionidae 5 — Metabolie Bedeutung He- xapoda 140 — Mundtheile Lepidoptera 162 — Mus- keln Arachnidae u. Poeci- lopoda 6 — Rückbildung in Höhlenwässern Gam- marus 29 — Rudimentäre Organe Ocellen Hexapoda 130 — Schalendrüse = Segmentalorgane Cyclops 21 — Skelet Limulus u. Scorpionidae 6. Phyloptera 174, 196. Phymaeus 290. Phymata 385. Phymatidae 385. Phymatodes 316, 322, 550. Phymatostetha 393. Physiologisches. Circulation Daphniidae 22 — Einfluß der Futter- pflanzen auf die Färbung Raupen 139, verschiede- ner Gifte Hexapoda 138, von Riechstoflen Hexa- poda 131, von Terpentin- öl Musca 132— Empfind- lichkeit gegen Kälte Ho- marus 29, gegen Licht Niphargus 30, gegen Wär- me Periplaneta 131 — Entwickelung beeinflußt von Licht und "Wärme Musca 159, von blauem Licht Musca 417, von Magnetismus Pieris 164, von der Nahrung Hemip- tera 375 — Erhärtung der Vorderflügel, Ursache Ur- coleoptera 142 — Extre- mitäten Embidinae 144, Anhänge Canthocamptus 19, Tetrophthalmus 157, Pleopodenanhänge Siriella 24, accessorische Füße (5 Sphaerotherium 115 — Excretionsorgane Amphi- poda 29, Antennen-Coxal- drüse u. Ausführungs- gänge der Genitaldrüsen Arthropoda 7, Analogie Macrotoma 132, grüne Drüse Astacus 29 — Fä- higkeit zu hungern Hexa- poda 138 — Farbstofi"e Werth Raupen 139 — Fettzellen im Blut Daph- niidae 22 — Genitalorga- ne Ejaculationsapparat Cypridae 22, Maxillardrüse Epeira 68, Nebenschlauch Cypridae 22, Spinndrüse Geophilus 113, Spermato- zoa Bewegung Periplaneta 145, Taster (5 Arachnidae 68 — Hautfalten Siriella 22 — Hinterleibsstiel Aus- wuchs Formica 149 — Klettern Hexapoda 132 — Phänomene der Erstickung und Wiederbelebung He- xapoda 138 — Respira- tionsorgane Kropf Gryllo- talpa 147, Stigmata Psyl- lidae 153, Entstehung der Kiemen Crustacea 16, der Lungen Scorpio 5 — Rückenorgan Crustacea u. Gryllotalpa 18 , Cyclops 21, Schalendrüse Cyclops 21 — Septum in den Hal- teren Diptera 158 — Sin- nesorgane Antennen Hy- menoptera 148, Auge Ar- thropoda 3, Nebenaugen Euphausia 24, 25, Seh- fähigkeit Hexapoda 130, Geruchsvermögen Homa- rus 28, Grenzen der Sin- neswahrnehmung Hexapo- da 130, Palpen Coleoptera und Orthoptera 131, Spä- tes Ausschlüpfen Telphusa 28 — Sprungapparat Psyl- lidae 153 — Stofi'wechsel im Ei Bombyx 163 — Ventraltubusdrüsen Ma- crotoma 142 — Verdau- ungsorgane Chitinskelet im Schlünde Mallophaga 157, Darm Chilopoda 116, Drüsen u. Muskeln Deca- poda 26, Mitteldarm Här- chensaum u. Epithel He- xapoda 134, Kopfdrüsen Geocoridae 152, Mund- werkzeuge u. Vorderdarm Formica 149, Unterkiefer- Eapillen Formica 148, peichel Apis 151, Resorp- tion Decapoda 27, Ver- dauung Sphaerogyna 71 ■ — Wachsdrüsen Psyllidae 153 — Wanderzellen Gryl- lotalpa 147, intracelluläre Verdauung Musca 159. Physocephala 432. Physogaster 91. Physoplectus 256. Physoronia n. 262-264. Physosterna 289, 290, 292. Physostomum 404. Physothorax 353. Phytalus 272, 273. Phytobius 308. Phytocoris 388, 389. Phytodecta 329. Phytoecia 315, 321, 322. Phytomyza 412, 413, 435, 556. Phytomyzina 435. Phytonomus 296, 297. 604 Register. Phytoptidae 83. Phytoptus TS, 83, 84, 412, 548. Phytorus 328. Phytoscaphus 299, 308. Phytosus 254. Plazet, E. 372. Piagetia n. 4U3, 405. Piazomias 297, 308. Piazorrhinus 300. Picaglia, L. 372. Pichler, Joh. 219. Picobia 85. Pictetia n. 182. Pidorus 513. Pierce, F. N. 408. Piepers, M. C. 462. Pieridae 477, 479, 485, 487, 493. Pierinae 475, 481, 491-493, 507. Pieris 414, 415, 474-478, 480, 481, 487, 488, 491, 492, 507-509, 547, 548, 556, 559. Piesma 384. Piesterotarsa 289, 292. Piestini 248. Piezocera 316, 322. Piezodorus 379, 381. Piezonotus 299. Piezoscelis 384. Piezostethus 387, Pigmente s. Histologisches u. Integumentgebilde. Pilophorus 388. Pilumnoplax 51. Pilumnus 50. Pim, H. B. 372. Pimelia 289, 291, 292. Pimpla 357, 359. Pinacia 493, 528, 535. Pindara 528. Pingrasa 525. Pinipestis 551. Pinnotheres51. Pinnotheridae 51. Pinophilini 248. Pinophilus 248, 249, 254. Pinotus 272. Pionea 484, 535, 547. Piophilina 434. Pipiza430, 431. Pipizella 430. Pipizinae 430. Pipimculidae 419, 432. Pipunculus 432. Pirata 102. Pirates 386. Pisa 50. Piso, C. 219, 462. Pison 361. Pissodes 551, 552. Pistills 97. Pityophagus 262, 552. Pityophthorus 312, 551. Piacodes 261. Piacodina 522. Plaesiocraerus 103. Plagia 415, 417, 439, 440. Plagiodera 329, 551-553. Plagiognathus 388, 389. Plagionotus 315. Plagiorhamma 388. Plagiosarus 323. Plagithmysus 316, 318, 321, 323. Plagodis 531. Planiceps 361, 362. Planipennia 179. Planocephalus n. 141, 166. Planta -Reichenau, A. von 128. Plastenis 526. Plastingia 494, 511. Plataphus 238. Plateau, F. 13, 128. Platephemera 141, 180. Plateros 280. Plateumaris 324. Pktisus 267. Plaxes n. 299, 309. Platyarthron 323. Platyarthrus 57. Platyblemmus 199, 200. Platybunus 108. Platycarcinus 51. Platvcerura 482, 558. Platycerus 270, 271. Platychila 385. Platy Chile 236. Platychirus 429-431. Platychrus 242. Platycleis 199. Platycnemis 177-179. Platycoelia 274. Platydema 290, 293. Platyderus 238, 244. Platyde.smus 119, 221. Platydidae 492, 493. Platydiina 522. Platvja 522, 524. Platylaemus 298, 308. Platylepas 36. Platymaja 50. Platymetopus 64. Platynaspis 337, 339. Platvnema 264. Platynus 239, 244. Platyomicus 308. Platyomida 308. Platyonychus 51. Platypalpus 429. Platypezidae 419. Platyphyma 198. PlatTphyniatia 272. Platvpidae 313. Platyplax 383. Platypleura 393. Platyprosoparia n. 248. Platyprosopus 248, 254. PlatypsylJidae 258. Platypsyllus 258, 442. Platypteridan. 180, 181. Platypterus 244. Platypteryx 558. Platvptilia477, 480, 488, 496, 541. Platyptilus 541. Platyrhamphus n. 308. Platysamia479, 481, 482, 519, 557. Platysma 239. Platysoma 259-261. Platystethus 248, 254. Platystoma 434, 435. Platystomina 434. Platytenes 299. Platytrachelus 308. Platytropeza 438. Platyura 422. Platyusa 254, Platyxantha 333. Plea 390. Plecia 422. Plecoptera 141, 176. Plectes 241. Plectonotum n. 284. Plectrocnemia 187. Plectromerus 316. Plectroscelis 330, 548. Plectrotes 272. Plegaderus 259, 261. Pleganophorus 264. Pleocoma 273. Pleonectusa 533, 534. Pleotomus 283. Pleretes 162, 516. Plesioneura 491-494, 510, 511. Plesiostigma n. 353. Pleurophorus 272. Pleurota 540. Pleurotropis 554. Pleuroxus 18, 31, 41, 42. Pleustes 53. Plexippus 98-100. Plinthisus 383. Ploas 428. Plochionocerus n. 247, 254. Plochionus 239. Plociomerus 383. Plodia 535. Ploiaria 387. Plotheia 522, 523, 525, 528. Plötz, C. 462. Plusargyria 517. Plusia 415, 476, 477, 486, 488, 495, 525, 528, 547, 548, 559. Plusiina 522. Plusiotis 274. Plutella475, 485, 547, 548. Plutonium 122. Poaphilidae 492. Register. 605 Poeadicnemis 103. Pocadites n. 262-264. Pocadius 262, 26 J. Pocota 430, 431. Podabrus 284. Podacanthus 197. Podagrica 333. Podagrion 177-179. Podhomala 289, 292. Podisus 379. Podium 361, 362. Podocerus 52. Podocinum 88. Podon 32. Podonta291. Podops 379-381. Podopsis 44. Podosesia 482, 559. Podurhippus n. 166. Poecilasma 35. Poecilimon 198. Poecilobothrus 429. Poeeilochirus 88. Poeeilochroa 96, 287. Poecilocoris 381. Poecilopoda 5, 6, 61-64. Poecilopsaltria 392. Poeciloptera n. 527, 528. Poeciloscytus 388, 389. Poecilosoma 348. Poecilostola 423. Poecilotheria n. 93, 94. Poecilus 237, 238, 244. Pogonillus n. 316, 323. Pogonitis 524. Pogonocherus 547, 552. Pogonomyrmex 359. Polanisa 353. Polemius 284. Poletajew, N. 128. Poletajewa, O. G. 128. Polia 202, 478, 488, 525. Poliaenus 316, 323. Polibete 504. Polistes 2, 363, 364. Pollenia 365, 415, 437. Pollicipes 59. Pollmann, A. 343. Polyartemia 42. Polyarthron 323. Polyaspis 88. Polyaulax n. 297, 309. Polycaena 485. Polycentropus 187, 191. Polychara 249. Polycheles 47, 48. Polyeope 59. Polycopidae 58. Polyctenes 441. Polvcyrtus 359. Polvdesmidae 119, 120. Polvdesmus 120, 547, 548. Polydonta431. Polvdrosus 553. Polvdrusus 309, 310. Polyernus n. 183. Polyetes 436. Polyliirma 244. Polylepta 422. Poljmitarcys 176. Polymorphismus. Aora 30. Verursacht durch Neotenie Hexapoda 138 — Dimor- phismus Arachnidae 76, Cambarus 28, Chalcididae 346, Dytiscidae 225, He- miptera 375, Lepidoptera 480. Polyneura 392. Polyommatus 478, 487, 490, 507. Polyphemidae 42. Polyphemus 22, 32, 33, 42. Polyphylla 272, 546. Polyphvma 380. Polypoetes n. 496, 516. Polvpogon 524. Polyptychus 482. Polysarcus 327. PolyStoma 251. Polytela 483. Polyxenidae 119. Polyxenus 118, 119. Polvzelus n. 299, 309. Polyzonidae 119, 121. Pomatinus 269. Pompilus 346, 359, 361, 362. Pomponia 393. Pontellidae 15. Pontia 491, 507, 508, 546. Pontomalota n. 254. Pontophilus 46. Pontoporeia 53. Poophagus 298, 309. Poophilus 393. Popilius 271. Poppe, S. A. 13. Porcellana 28, 49. Porcellanidae 49. Porcellanides n. 49. Porcellio 57, 58. Porismus 185. Poroblattina n. 201. Poropterus 299, 309. Porotermes 176. Porphyraspis 336. Porphyrhyba 293. Porphyrops 429. Porrhomma 105. Porritt, Geo. T. 462. Porthesia 479, 482, 517. Porthetria 518. Portschinsky, J. 408, 463. Portunidae 51. Portunus 19, 51. Porydra 433. Postembryonalentwickelung s. Ontogenetisches. Potamobiinae 47. Potamoichetor 38. Potamophora 493, 523, 528. Potter, J. 463. PoUchet, G., & J. de Guerne 13. Poujade, G.A. 170, 219, 343, 408, 463. Poulton, Edw. B. 128, 463. Pradiota 524. Praeochralea n. 333. Pranizidae 55. Praocis 235. Praodes n. 299, 309. Praogena 289, 293. Präparation s. Technisches. Praxithea 320. Precis 490, 491, 502, 503, 505. Prepona 503, 505. Prestwichia 64. Preudhomme de Borre, Alfr. 116, 219, 444. Pria 262. Priocnemis 362. Prioneris 507. Prionomerinae 299. Prionopelmus 353. Prionopteryx 534. Prionota n. 424. Prionotus 386. Priononyx361, 362. Prionurus 111. Prionus 316, 551. Prioscelis 289. Prismosticta 518. Pristodactyla 244. Pristoscelis 553. Proarna 393. Proboscimyia 436. Procerus 237, 238, 244, Procris 493, 513. Procrustes 237, 244, 546. Proctacanthus 427, 428. Proctophyllodes 85, 86, 88. Proctotrupidae 353. Prodenia 494, 525, 528. Proderops 293. Proderus 382, 383. Prodidomidae 96. Prodidomus 96. Prodioctes 300, 309. Prodryas 541. Prolyctes 265. Promachus 427, 428. Promecosoma n. 380, 381. Promylacris n. 201, Promysis 44. Pronaeus 361. Propalticus 268, 269. Propteticus n. 183. Proscorpionini 114. Proscorpius n, 1 14. Proselena 538. Prosena 438. Prosodes 289, 293. 606 Kegister. Prosopis 346. Prosopistoma 173. Prosopodonta 334, 335. Prosopotheca 103. Prostemma 386. Prosthesima 95, 96. Prostomis 267. Protaetia 274-276. Protagrionn. 180, 181. Protalges 86. Proteides491, 492,510, 511. Protella 51, 52. Protephemerina n. 180,181. Proterrhinus 313. Protheodes 528. Prothoe n. 491, 492, 503, 505. Protinus 254. Proto 51, 52. Protocapnia n. 181. Protocerius 299. Protociccus 401. Protadiamphipnoa n. 182. Protodonata n. 182. Protogryllacris 202. Protokollaria n. 182. Protomantis 297, 299, 309. Protomedea 53. Protomyrmeleonidae n. 180, 181. Protoneura 177-179. Protoparce 482. Protoperia n. 182. Protoperlida n. 180, 181. Protophasma 202, 203. Protophasmida 179-181, 200. Protophasmidae 141, 203. Protoplasma s. Histologi- sches. Protoplectron 185. Protoscalaphus n. 182. Protoscutigeridae 116. Protosticta n. 179. Protostraca 18. Protosyiignatha 71, 124. Protracheata 65-67 . Proxys 379. Pryer, H. 463. Psacasta 379-381. Psalidognathus 315, 316, 323. Psallidomyia 432. Psallus 388. Psammodes 289. 293. Psammoecus 267. Psammophila 361. Psammotherma 360. Psanis 430. Psecas 98. Pselaphidae 255. Psenobolus n. 356. Psepholax 300. Pseudacraea491, 5U2, 503. Pseudadorium n. 333. Pseudagenia 361. Pseudalypia 512. Pseudalloptes 86, 87. Pseudamycus n. 99, 100. Pseudarmadillo 57. Pseudebessa 496, 516. Pseudicius n. 79,98, 99, 101. Pseudobombyces 487. Pseudocholus 299, 309. Pseudocolaspis 328. Pseudocolaspitae 326. Pseudocoremia 530. Pseudocryobius 242, 243. Pseudodeltoidae 522. Pseudodiaptomus n. 38. Pseudodineura n. 348. Pseudoepitrix n. 330, 333. Pseudogona n. 330, 333. Pseudolus n. 300, 309, 310. Pseudomantis 197. Pseudomarica 92. Pseudomeloe 235. Pseudomennis 496, 516. Pseudomma 43, 44. Pseudomus 309. Pseudomutilla n. 360. Pseudomyrmecion n. 323. Pseudoneuroptera. Anatomie , üntogenie etc. 144 — Biologie, Jiigend- formen etc. 171-173 — Faunistik 173-184— Li- teratur 167 - 171 — Palä- ontologie 179-184 — Scha- den, Nutzen, Vertilgungs- mittel, Pflege 549— Syste- matik 174-184. Pseudonosoderma n. 289, 293. Pseudonympha 491, 499. Pseudopanthera 531. Pseudopelta 257. Pseudophia 483, 523. Pseudophlaeus 381. Pseudophytobius n. 309. Pseudoplectus 255, 256. Pseudopontia 507. Pseudorhombila 51. Pseudoscorpiones 109, 113. Pseudosida n. 40. Pseudosphex 361. Pseudostigma 177, 178. Pseudotalara n. 496, 516. Pseudotarphius 264, 265. Pseudotelphusa 28, 60. Pseudoterpna 531. Pseudotremia 120. Psila433. Psilina 433. Psilocephalus 256. Psilocladus 281-283. Psiloderes 285, 286. Psilodontis 415. Psilopa 433. Psilophrys 353. Psiloptera 277. Psilopus 429. Psilosoma 433. Psilota 430. Psilotrogus n. 300, 309. Psilura 518. Psimada 522. Psinidia 197. Psithyrus 346. Psocidae 141, 172-174. Psocina 183. Psocini 175. Psocus 171, 173-175. Psodos496, 531, 533. Psyche 483, 486, 520. Psychidae 483, 489, 492-494, 520. Psycho da 416. Psychologisches. Arachnidae 76 — Mitge- fühl Musca 411. Psychomia 187. Psychomorpha 512. Psychopsis 185. Psydrus 237. Psylla 152, 154, 155, 394. 555. Psyllidae 152, 155, 394. Psylliodes 330, 333, 548. Psyllobora 338. Psyllopsis 152, 154, 394. Psyrassa 323. Ptecticus 424, 425. Ptenidium 259. Ptenus 280. Pteralloptes 86. Pterichthya 323. Ptericoptus 323. Pterinoblattina n. 201. Pterochilus 364. Pterocolus 85, 86. Pterodectes 86, 87. Pterogon 511. Pterolepis 199. Pterolichus 86, 87. Pteroloma 257, 258. Pteromalus 353, 413, 556. Pteronyssus 86, 87. Pteroodes 496. Pteropaectria 434. Pterophagus 86, 88. Pterophoridae 485-487, 489- 494. Pterophorus 485, 541. Pteroplatus 323. Pteroptila 430, 431. Pteroptus 88, 89. Pteroscopus 423. Pterostichus 237, 238, 242, 558. Pterostoma 477, 487. Pterothysanus 513, 514. Pterygogenea n. 140, 141, 165. Ptiliodes 259. Ptilium 259. Ptilocera 424, 439. Kegister. 607 Ptilochaeta 43S, 439. Ptilona 432. Ptilophora 477. Ptinella 259. Ptinidae 287. Ptinini 287. Ptinus 226, 287, 552. Ptiolina 426. Ptocadica 330. Ptocasius n. 100, 101. Ptocheusa 485, 540. Ptochidius 297. Ptochus 309. Ptolycus n. 299, 309. Ptomaphagus 257, 258. Ptorthodius 287. Ptosima 277. Ptychodes 323. Ptychogaster 48. Ptychoglene 496, 516, Ptychosoma 109. Ptyelus 593. Ptylostylum 438. Pulex415. Pulicidae 442. Pullen, G. 463. Pullus 338, 339. Pulvinaria 399, 400, 547, 555. Pupipara 161, 419, 420, 441. Puppe s. Ontogenetisches. Purdie, A. 463. Purlisa n. 505, 507. Purpuricenus 315, 316, 323. Puton, Aug. 372. Putonia 3S0, 381. Pycina 503. Pycnocerus 289. Pycnocraerus 254. Pycnogonum 7,8. Pycnomerus 264-266. Pygaera 547. Pygaerina 520. Pygidicrana 196. Pygostenus 248. Pylocheles 49. Pyractomena 283. Pyralidae 484, 486, '487, 489- 494, 511. Pyralididae 494. P)-ralis 494, 533, 534, 536, 537. Pyralopsis 496. Pyrameis 481, 487, 490, 502. Pyrapractus n. 279. Pyrellia 437. Pyres n. 289, 293. Pyrgomorpha 197. Pyrgomorphidae 197. Pyrgoniscus 57. Pyrgotis 538. Pyrgus 511. Pyrocoelia 281, 283. Pyrodes 323. PjTomorpha 512. Pyromorphina 512. Pyrophaena 429, 430. Pyrophanes n. 2S3. Pyropyga 283. Pyrota 295, 296. Pyrrhia 558. Pyrrhocorina 382. Pyrrhocoris 135, 382-384. Pyrrhogyra 502. Pyrrhosoma 172. Pyrrhotaenia 495, 512. Pyrrosia 438. Pythonissa 80, 96. Quajat, ... 128. Quatrefages, A. de 463. Quedenfeldt, G. 219. Quedenfeldt, M. 219. Quediaria n. 248. Quedius 246, 248, 254. Rabaud, Etienne 219, 463. Rabaux, E. 464. Rabigus 253. Radoszkovski, O. 344. Raffaelle, F., & F. S. Mon- ticelli 13. Ragliodes n. 382, 384. Raglius 384. Ragonot, E. L. 464. Ragusa, Enrico 219, 464. Rakovnicia n. 113. Ralfe, T. H. 464. Raine, A. 464. Ramsden, H. 464. Randallia 49. Rauina 49, 59. Raninidae 49. Rant, Math. 554. Rapala 505. Raphignathus 92. Raphirus 247. Raspail, H. 464. Rathbun, Rieh. 13. Ratte, F. 373. Ratzeburg, J. Th. Ch. 544. Raupe s. Ontogenetisches. Rautenberg, Fr. 220. Ravanoa n. 533, 534, 537. Raymondia 441. Raynor, G. H. 464. Rectaldrüsen s. Verdauungs- system. Redtenbacher, Josef 170, 409. Reduviidae 378, 386. Reduvius 386. Reed, . . . 464. Rees, J. van 128. Regeneration. Uarmepithel Decapoda 26, Hexapoda 134, Phronima 29 — Histogenese u. Neu- bildung der Organe in der Puppe Musca 160, 161. Regimbart, M. 220. Rehimena 533, 534. Reinhard, H. 344. Reitter, Edmund 220. Reitteria 268. Remigia483, 494, 522-525, 527, 528. Remigiidae 492, 493. Rendali, P. 464. Renian. 261. Respirationssystem. Extremitäten Betheiligung an der Respiration Crusta- cea 15, 16 — Integum ent- falte Schizopoda 24 — Kropf Beziehung zur Ath- mung Gryllotalpa 147 — Kiemen Ontogenetisches Limulus 62, Morphologie und Phylogenie Crustacea 16, 17, Kiemenfäden Acen- tropus 162 — Lunge Innervation Arachnidae 6, Phylogenetisches Scorpio- nidae 5 — Pleopodenan- hänge Siriella 24 — Tra- cheensystem Aspidiotus 155,Chermetidae 156, Coc- cidae 156, Psyllidae 153, Sphaerotherium 115, Be- theiligung am Aufbau des Auges Arthropoda 4, Hy- menoptera 3, Eintritt der Luft Botys 164, Flügel Hexapoda 133, Hinterleib Halarachne 69, Histologi- sches Tracheata 2, Histo- lyse Musca 160, Larve Aeschna 144, Mundtheile Lepidoptera 162, Ontoge- netisches Apis 150, Gryllo- talpa 147, Phylogenetisches Arthropoda 5, Tracheen- blasen Galleriaraupe 163 — Tracheenkiemen Acen- tropus 162, Histologisches Diptera 159, Homologie mit den Flügeln Hexapoda 140 — Stigmen Mallo- phaga 158, Anordnung Scolopendreila 115, Anzahl und Lage Hexapoda 149, Gitterstigmen Coleoptera 148. Retinia 415, 480, 4S4, 538, 557. Retitelariae 112. Retowski, O. 220. Reuter, O. M. 165, 192, 373. Reveliera 268. Rey, Claude 221. Reynolds, L. M. 464. Rhabdophorus 328. 608 Register. Rhabdopterus n. n. 328. Rhachieerus 425. Rhacius n. 289, 293. Rhacocleis 199. Rhagium 316, 551, 552. Rhagonycha 132, 231, 284. Rhagophthalmus 283. Rhambastus 328. Rhamphina 43S. Rhamphinina n. 438, 439. Rhamphomyia 429. Rhantus 245. Rhaphidophora 193, 199. Rhaphigaster 554. Rhaphium 429. Rhapiocera 425. Rhax 79, 80, 112. Rhina 309. Rhinandrus 289, 291, 293. Rhinaria 309. Rhingia 430. Rhinocola 152, 153, 394. Rhinognathus 309. Rhinoncus 300, 308, 309. Rhinopalpa 502. Rhinophora 439. Rhinoscapha 299, 309. Rhipiceridae 279. Rhipidioptera 401. RMpidorhabdae n. 164. Rhipidorhabdus n. 541. Rhipiphoridae 295. Rhithrogena 172. Rhizobiini 338. Rhizobius 337. Rhizoglyphus 78, Rhizogramina 528. Rhizophagina 262. Rhizophagus 262, 264. Rhizotrogus 272, 273. Rbodan. 122. Rhodaria 534. Rhodobaenus 297, 309. Rbodocera 488. Pthodoneura 534, 537. Rhodostrophia 531. Rhogas 355, 356. Rhogogaster (a) 349. Rhopalocera 474, 476, 477, 481, 486, 487, 489-491, 495, 497. Rbopalodes 496, 531, 533. Rhopalopachys 323. Rhopalophora 323. Rhopalopus 315. Rhopalosiphum 395, 396, 398, 399. Rhophalus 381. Rhophobota 484, 489. Rhopus 351. Rhyacophila 187. Rhyacophilidae 187. Rhychoenus 553. Rhymosia421, 422. Rhynchina 528. Rhynchiodexia n. 438, 439. Rhynchites 296, 298, 299, 309, 546. Rhynchitinae 299. Rbynchium 363, 364. Rhvncholophidae 83, 92. Rhyncholophus 92, 93. Rhyncholus 296, 298, 302, 304, 308-311. Rhynchomyia 414, 432, 437. Rhynchopliorus 299, 310. Rhynchota 141. Rhyncogonus n. 300, 310. Rhyparia 484. Rhyparida 328. Rhyparochromaria 382. Rhyparochromus 383, 384. Rhyparosominae 299. Rhvpax n. 300, 310. Rbvphidae 420, 424. Rhyphfis 424. Rhypochromus 297. Rhyscotus n. 57, 58. Rhyssa 357, 554. Rhyssalus 355. Rhyssonotus 271. Rhytia 483, 522. Rhytidosoma 298, 310. Rhytiphora 316. Rhytirrhinus 296, 310. Rhyzopertha 2S8. Ribbe, C, & H. Kühn 464. Ricania 201. Richard, J. 117. Richardma 46, 434. Richardson, N. M. 464. Ricksecker, L. E. 221. Ridding, W. S. 464. Riggio, G. 13, 344, 373, 464. Riley, Charles V. 75, 192, 221, 344, 373, 409, 465, 544. Rinecera n. 494, 537. Rioxa 432. Rithma 201. Ritsema, C. 170, 221, 344. Rivellia 432. Rivula 529. Röber, J. 465. Robin, Gh., & A. Laboul- bene 465. Robinson, A. 465, Robinson, T. 409. Robinsonia 496. Robson, J. E. 465. Rochebrune, A. T. de 465. Rocinela 55. Röder, V. von 409. Rodgers, J. T. 465. Roebuck, W. D. 465. Roebuck, W. D., & W. E. Clarke 465. Roelofs, W. 221. Roeselia 516. Rogenhofer, A. 465. Romaleum 316, 323. Romanes, G. J. 2, 344. Romanoff, N. M. 465. Romanoffia 496, 521. Roncus 109. Rondot, N. 465. Rondotia n. 482, 492, 518, Ropala 481. Rosalia 315, Rosama 520. Rosapha 424. Rose, A. J. 465. Rose, G. 465. Rosenstock, R. 465. Rossiter, T. B. 128. Roster, D. 170, 221. Roth. Henry Ling 344, 365, 544. Roüast, G. 466. RouUet, A. 221. Rowntree, A. 466. Royer, Ch. 466. Rudimentäre Organe s. Phy- logenetisches. Rudra n. 101. Rühl. Fritz 221, 374. Rumia 476, 531. Runcinia 97. Ruscina 496. Ruscino 514. Rusicada 522. Rusina 525. Rutelini 273. Rutilia 432, 438. Rymosia 422. S., G. S. 374. Saalmüller, M. 170, 466. Sabatier, Arm. 13. Sabelliphilus 38. Sabienus 244. Sabinea 46. Sacatia 534. Sacculina 19. Sacium 258. Saga 199. Sagaris 496, 516. Sagidae 199. Sagola 255, 256. Sahlberg, John 221, 374. Saint-Andre, Henri de 222. St. John, J. Seymour 470. Saint-Loup. R. 13. Sais 495, 498. Saitis 101. Salamis 490, 491, 502-505. Salbia 534. Salcus 299, 310. Salda 387. Saldidae 378, 387. Salebria 492, 535, 537. Saletara n. 509. Salius 362. SaUaea 496. Rearister. 609 Salle, A. 222. Salpis n. 496, 533. Saltatoria 141. 196, 200, 202. Salticidae 98. Salticus 76, 77, 98, 100, 101. Saltigradae 112. Samea 533, 534. Sameodes 535. Samera n. 490, 516. Samia 476, 519, 558. Sammeln s. Technisches. Sandalodes 101. Sandalus 279. Sandberg, G. 466. Sandford, H. C. 466. Sang, J. 170, 222, 466. Sangala 496, 514, 516. Sangaria 330. Santos, . . . 466. Sanys 522. Sapaea 510. Saperda 132, 315, 550-553. Saphanus 315. Saprinini 259, Saprinus 259-261. Sapromyza 432, 434. Saprosites 271. Sapyga 360. Sarconesia 437. Sarcophaga 414-417, 432, 437. Sarcophagina 437. Sarcophila 416, 437. Sarcopsyllidae 442. Sarcoptes 84. Sarcoptidae 83, 84, 549. Sarcoptina 84. Sargina 425. Sargus 424, 425. Sarillus n. 316, o23. Saronychium 239. Sarrothripa 516, 523. Sarrotrium 264. Sars, G. O. 13. Satadra 506, 507. Sataspes 492, 512. Satrapea n. 259, 261, Saturnia 2, 133, 164, 415, 482, 491, 519. Saturniidae 482, 489, 491- 493, 496, 519. Saturnina 519. Satyridae 485, 490, 492, 493. Satyrina 497. Satyrinae 481, 487, 491, 492, 499. Satyrites 541. Sastragala 379, 381. Sastrapoda 386. Satyrus 480, 481, 487-491, 493, 499, 500. Saugapparate s. Haftapparate u. Verdauungssystem. Saunders, E. 344, 466. Zool. Jahresbericht. 1885. II. Saunders, W. 466, 544. Sauris 530. Saurohypnus n. 247, 254. Saussure, H. de 193. Savard, E. 75, 374, 409, 466. Saxinis 326. Scada 495, 498. Scalidoneura 508. Scalpellum 35. Scamboneura 423. Scantius 382. Scaphidiidae 259. Scaphium 259. Scapholeberis 40, 41. Scaphosoma 259. Scaphula 392. Scaptia 496. Scarabaeidae 271, 273. Scarabaeus 272. Scariphaeus 248. Scatella 433. Scatina 432. Scatophaga 432. Scatophagina 432. Scatopsyle 514. Scaurus 293. Scea496, 516. Scedros 496, 514. . Sceliodes 535. Scelodonta 326, 328, 552. Soenopinidae 429. Scenopinus 136, 420, 429. Scepsis495, 512, 513. Schaden s. Nutzen u. Scha- den. Schäfer, E. A. 2. Schallapparate s. Tonappa- rate. Schaposchnikow, N. 344. Schattenmann, A. 466. Schatz, E. 466. Schaufuß, L. W. 222. Schilde, Joh. 75, 467. Schilsky, J. 222. Schimkewitsch , Wlad. 13, 67, 193, 409. Schistocera 194, 198. Schizocera 347. Schizoneura 395 - 397, 548, 554, 555. Schizoneurina 395. Schizophora 419. Schizopoda 15, 17, 18, 24, 25, 32, 43, 59. Schizoproctidae n. 36. Schizoproctus n. 36. Schizopus 277. Schizorrhina 276. Schizostege 531. Schizothoraca 139. Schlechtendal, D. H. R. von 75, 374, 467. Schlechtendalia 397. Schletterer, Aug. 344. Schmid, A. 467. Schmidt, Fr. 60. Schmidt, Joh. 222. Schmidt, Oscar 128, 374. Schmiedeknecht, O. 344. Schneider, A. 128, 409. Schneider, J. Sparre 7, 14, 222 409 467. Schneider,' Rob. 14, 75, 409. Schneider, W. G. 170. Schoch, Gust. 128. Scholastes 432, 435. Schöyen, W. M. 467. Schreiber, E. 222. Schnitze, ... 222. Schuppen s. Integumentgc- bilde. Schwarz, E. A. 222, 544. Schwimmen s. Locomotion. Sciaphila 484, 488, 538. Sciara 421, 422. Scieroptera 393. Scintilla 539. Sciocharis n. 248, 254. Sciocoris 379. Sciodrepa 257, 258. Sciomyza 433. Sciomyzina 433. Sciophagus n. 290, 293. Sciophila 421, 422. Sciophorus 290. Scirpophaga 535. Scirtites IUI. Sclater, ...222. Sclerochilus 59, 60. Sclerocrangon 46. Scleropactes n. 57, 58. Sclerosoma 108. Scodiona 531, 533. Scolia 151. Scoliomima n. 478, 491, 512. Scoliopelta 425. Scolioplanes 116, 117, 122, 123. Scolopendra 115, 121, 122. Scolopendrella 112, 124. Scolopendrellidae 119, 124. Scolopendridae 119, 121. Scolopendropsis 122. Scolopocryptops 121, 122. Scolytidae 312. Scolytus 312, 550. Scopaeus 248, 249, 252, 254. Scoparia 488, 494, 534, 535, 537. Scopariadae 494. Scopelodes 529. Scopiphora 38. Scopolia 413, 432, 439. Scopula 484, 535, 537. Scorpio 5, 6, 110, 111. Scorpiones 71, 110, 112, 113. Scorpionidae 6. Scoterpes 120. Scotiptera 439. 39 610 Besister. Scotobaenus 293. Scotocryptus 258. Scotodipnus 243, 244. Scotosia 488, 530, 531. Scraptia294. Scudder, Samuel H. 67, 75, 117, 129, 165, 170, 193, 222, 344, 374, 409, 467. Scudderia n. 181. Scurria 68, 94. Scuterella 381. Scutigera2, 3, 115, 118, 121, 123, 124. Scutigerella 124. Scutigeridae 119, 121, 124. Scutinoblattina n. 201. Scybalicus 238. Scydmaenidae 256. Scvdmaenus 257. Scylaticus 416, 427. Scylla 507. Scyllarus 25-27. Scymnini 337. Scymnus 337-339. Scyphax 57. Scyphius 91. Scyramathia 50. Scythroleus n. 316, 323. Scythropa 101. Scythropia 485. Scythropus 298, 299, 310. Scytodes 104. Scvtodidae 104. Searle, E. 467. Seba 52. Sebaethe 330, 333. Secretion s. Physiologisches. Sede, P. de 14. Sedgwick, Ad. 65. Segestria 68, 77, 94. Segmentalorgane s. Excre- tionsorgane. Segmentirung s. Stamm. Seguenza, G. 14. Seher, Thaddens 222. Sehirus 379. Sehnen s. Muskelsystem. Sehorgane s. Sinnesorgane. Seirarctia 517. Sejus 88, 89. Selamia 80, 105. Seiandria 347, 349, 414, 415, 547, 553, 554. Selenia 531. Selenis 524. Selenocephalus 390. Selenophorus 244. Selenops 97, 98, Seiepa 483, 522, 523, 529. Seleuca 299. Selys - Longchamps , Ed. de 169, 170. Semiadalia 337, 338. Semioceros534. Semiona n. 328. Semiotellus 350, 352, 353, 556. Semiothisa 531. Semper, G. 467. Senac, H. 222. Seneratia 522, 529. Senogaster 431. Senostoma 438. Sepedon 432, 433. Sepidium 289, 293. Sepp, Chr. 467. Sepsina 434. Sepsis 432, 434. Serenthia 384, 385. Sergestes 15, 16, 45. Sergestidae 45. Serica 273. Sericaria 474. Sericia 522, 524. Sericinus 485, 509. Sericocera 435, 439. Sericoderus 258, 259. Sericomyia 430, 431. Sericomyinae 431. Sericostoma 187. Sericostomatidae 187. Seriziat, ... 467. Serolis 30, 32, 34, 55. Serrodes483,522. Serropalpus 294. Servillea 439. Sesarma 51. Sesia 163, 415,475,479,482, 488, 489, 512, 548, 559. Sesiidae 476, 482, 489, 493, 497,512. Sesiina 51 1. Sesiomorpha n. 492, 540. Sestra 530. Setina 482. Setomorpha 540. Sexualcharactere, secmi- däre. Apidae 346 — Lepidoptera 475 — Serolis 30. Bedeutung derselben für die Metamorphose Hexa- poda 140 — Bürste an der Vordertibia Catocala 163. Seyrig, A. 222. Sezeris 517. Sharp, David 222. Sharp, H. 467. Sharpia 310. Sheldon, W. G. 467. Shufeldt, R. W. 223, 374. Sialidae 141, 179, 183. Sialina 180, 188. Sibinia 298, 310, 312. Sibiniini 298. Sibynes 298, 310. Sickmann, Franz 75, 223, 344, 409. Siculidae 493, 511. Sicus 432. Sida 31, 40. Sididae 23, 32, 40. Sidis 338, 339. Sigalphua 355, 356. Sigara 390. Signoret, V. 374. Silbomyia n. 438, 439. Silenia481. Silis 284, 285. Silo 187. Silpha 546, 547, 552, 557, 558. Silphidae 257. Silvanus 266, 267, 548, 551, 552 Silvius 426. Simaethea 331, 333. Simaethis 540, 547. Simocephalus 22, 40, 41. Simodactylus 277. Simon, Eugene 14, 75. Simonella n. 101. Simony, Oscar 409. Sims, H. T. 374. Simulia 411, 422. Simuliidae 422. Simulium 414. SimjTa 483. 490, 521. Singa 106-108. Sinis 101. Sinna 514. Sinnesorgane. Coccidae 156. Aeroscope Halteren Dip- tera 158 — Antennen Hy- menoptera 148, Sphaero- therium 116, blasse Kol- ben Copepoda 19 — In- nervation Aspidiotus 155 — Sinnesborsten Macro- toma 143 — Sinnesfeld Halarachne 69 — Sinnes- papillen Ontogenetisches Peripatus 66 — Vorstülp- bares Sinnesorgan an den Beinen Peripatus 65 — Wahrnehmungsgrenze der Sinne Hexapoda 130. Gehörorgane: Arach- nidae 68 — Chordotonal- organe Arachnidae 68 — Grube Sphaerotherium 16 — Maxillarorgan Scuti- gera 115. Geruchsorg an e: Epei- ra 68 — Hexapoda 131 — Antennengruben Psylli- dae 153 — Palpen Coleop- tera und Orthoptera 131 — Riechborsten Ontoge- netisches Atyephyra 28 — Riechfäden Serolis 30 — Riechzäpfchen Aufnahme von Eisen Gammarus 29. Geschmackso rgane: Register. 611 Asellus 30 — HjTnenop- tera 130 — Unterkiefer- papille Formica 148. Sehorgane: Arthropoda 2 — Chermetidae lob — Lepidoptera 162 — Psylli- dae 153 — Serolis 30 — Squilla 3 — Trichodacty- lus 70 — Diehoptisch u. holoptisch Diptera 410 — Nebenaugen Function Eu- phausia 24 — Ontoge- netisches Cyclops 20, Li- mulus 62, 63, Peripatus 66, Phylloxera 157 — Phylogenetisches Arthro- poda 5 — Regeneration Musca 161 — Sehfähig- keit Hexapoda 130 — Stellung Phylogenetisches Araneidae und Limulus 63 — Stemmata Mallophaga 158 — Verkümmerung Gammarus 29. Tastorgane: Bauchta- ster Halarachne 69 — Borsten Gammarus 29 — Haare Serolis 30 — Stifte der Maxillartaster Tricho- dactylus 70. Sinodendron 148. Sinoxylon 288, 551. Sintectodes 256. Sintenis, Franz 409, 467. Sintula 105. Siona 531. Sipalus 300, 310. Siphlurus 171, 172, 176, 177. Siphona 415, 417. Siphonaptera. Literatur 405-410 — Sy- stematik 141, 442. Siphonella 556. Siphoniomyia n. 438, 439. Siphonophora 119, 121, 395, 396, 399, 555. Siphonophoridae 121. Siphonophorides 395. Sirex 133, 349. Siriella 17, 24, 44, 56. Siriocauta 534. Sirostoma 438. Siteutes 299, 300. Sithon 491, 505, 506. Sitona 547. Sitono(es) 298, 299, 310. Sitophagus267. Sitophilus 552. Sitotroga 559. Siva 390. Skeletsystem. Limulus u. Scorpionidae 6. Chitingerüst des Ejacu- lationsapparates Cypridae 22 — Entoskelet Hala- rachne 68, 69 — Flug- skelet Hexapoda 133 — Hautskelet und Entotho- rax Formica 149. Slack, ... 467. Sladen, C. A. 467. Slater, J.W. 129, 467. Slösarski, A. 223, 409. Smaridia 93. Smarididae 92. Smaris 92. Smerina 491, 503. Smerinthi 497. Smerinthinae 511. Smerinthus 139, 166, 415, 475, 476, 480-482, 511, 557, 558. Smethurst, Ch. 467. Smicra 350, 353. Smicronyx 310. Smilia 554. Smith, A. C. 14. Smith, Henley G. 468. Smith, H. H. 468. Smith, J. B. 191, 223, 468, 544. Smith, Rosa 75. Smith, Sidn. J. 14. Smithia 491, 499. Smodicum 550. Smynthuridae 165. Smynthurus 165. Smyrna 503. Snelleman, J. F. 468. Snellen, P. C. T. 468. Socarnes 53. Solenocera 46. Solenopsis 79. Solenoptera 323. Solenostethium 379. Solifugae 112. Solpuga79, 112. Solpugidae 112. Sommer, Albert 129. Somoleptus n. 247, 254. Somomyia 432. Sonagara 483, 522, 524. Sonomyia 437. Sophia 438, 439. Sophronia 524, 540. Sordelli, F. 468. Sorhageu, L. 468. Sorocostia n. 537. Soronia 262, 264. Sotenus 316. Sotira n. 323. South, R. 469. Spadix 529. Spaelotis 529. Spaeth, F. 223. Spalacopsis 323. Spania 426. Spanista 534. Sparassidae 97. Sparassus 97, 98. Sparre-Schneider, J. 7, 14, 222, 409, 467. Spathiogaster 430. Spathipheromyia 436. Spathius 356. Spathizus n. 283. Spathochus 259. Speicheldrüsen s. Verdau- ungssystem. Speiredonia 522-524. Spencer, W. Baldwin 14. Sperchon n. 92. Sperma s. Genitalorgane. Spermatophora 496, 537. Spermophagus 314, 315. Speyer, A. 469. Sphaenorhina 393. Sphaeridium 264. Sphaerionillum n. 316, 323. Sphaerites 257. Sphaeroderma 330, 333. Sphaerogyna n. 71, 91. Sphaeroma 55. Sphaerometopa 330, 333. Sphaeromidae 55, 58. Spaeronella 36. Sphaeroniscus 57. Sphaerophoria 430. Sphaerophthalma 360. Sphaeropoeus 120. Sphaerotherium 115. 120. Sphaerula 310. Sphecodes 346, 359, 365. Sphecomyia 431. Sphecoptera n. 181. Sphegina 429, 430. Sphenocorynes 300, 310. Sphenophorus 296-300, 305, 307, 308, 310, 311, 552. 553. Sphenopsilus n. 316, 323. Sphenoptera 277. Sphenothecus 323. Sphex 151, 346, 361, 362. Sphingidae 274, 475, 477, 481, 487, 489-495, 497, 511. Sphingina 511. Sphinginus 285. Sphingomorpha 522, 524. Sphingonotus 197. Sphinx 4, 131, 133, 163, 415, 476 - 482, 486 - 488, 490, 495, 496, 511, 512, 541, 559. Sphodristocarabus 241. Sphodroides 238. Sphragisticus 382, 384. Sphyracephala 432. Sphyrapus 54. Spilaptera n. 181. Spilispa 334. Spiloblattina n. 201. Spilochalcis 350, 353. Spilogaster 437. 39* 612 Register. Spilographa 413, 434. Spilomela 535. Spilomyia 430, 431. Spilosoma 496, 516, 517,557, 558. Spilostethus 383. Spilota 273. Spindasis 491, 507. Spinndrüsen s. Verdauungs- system. Spinthemyia 439. Spintherizomyia n. 438, 439. Spintherops 415. Spirama 522. Spirobolus 119-121. Spirostreptus 119. Spoladea 534. Squilla 3, 4, 17, 43. Squillidae 17, 43, 59. Srnka, A. 4ti9. Stachygraphis 247, 249. Stack, E. 544. Stagetillus n. 101. Stagmatophora 485, 540. Stainton, H. T. 344, 469. Stainton, H. T., & O. J. Westwood 344. Stamm. Planocephalus 141. Antennen u. Fühler'. Mal- lophaga 158, Behaarung und Musculatur Apis 148, Höhlen-Gammarus 29, In- nervation Apus 23, Aspi- diotus 155, Homologie (5 und Q Copepoda 19,Cru- stacea 15, Ontogenetisches Hexapoda 131, = Posto- rale Gliedmaße Apus 23, Sexuelle Charactere Sero- lis 30 ; Sinnesorgane Hy- menoptera 148, Sphaero- therium 116, Geruchssinn Hexapoda 13t, Grube Psyllidae 153, Riech- und Tastfäden Serolis 30; Ver- halten bei der Metamor- phose Aspidiotus 155, An- tennendrüse Ontogeneti- sches Atyephyra 28, (5 Taster Function Aranei- dae 68 — Abdomen Con- tractionsf ähigkeit der Pup- pe Musca 161 , Extremi- täten Apisembryo 151, Lagoa 475, Phylloxera 157, Haltung und Appa- rate dazu Halarachne ö9, Segmente Anzahl Embidi- nae 144, Stridulationsap- parat Coleoptera 148 — Gestaltsveränderung Da- phnia 22 — Kopf Neu- bildung in der Puppe Musca 161, transitoriscne Gliedmaßen Apis 151 — Rumpfmuskeln Verhalten bei der Metamorphose Trichodactylus 71 — Seg- mentirung Hexapoda 148, Limulus 62, Psyllidae 152, Anzahl Gryllotalpa 146, Raupen Lepidoptera 164, 475, Leptostraca 23, Phy- logenetisches Arachnidae und Poecilopoda 6, Ver- halten der Thoraxsegmente zum Abdomen als Classi- ficationsprincip Hexapoda 140, Gliederung Halarach- ne 69, Ringelung Ontoge- netisches Peripatus 66 — Stigmata Scolopendrella 115 — Thorax Criterium für die Eintheilung Hexa- poda 139 ; Musculatur Hexapoda 133, Araneae (Histologisches) 67. Standfuß, M. 469. Stanneoclavis 107, 108. Stansfield, C. E. 469. Staphylinaria 248. Staphylinidae 246. Staphylinina 247, 248. Staphylinus 246, 248, 254, 546. Staria 379. Statira 530. Staudinger, O. 469. Stauronotus 194, 197, 414. Steatoda 105. Stebbing, Th. R. R. 14. Stegania 557. Steganoptycha 538, 55 Stegocephalos 53. Stegodyphus 79, 95. Stegoplax 54. Stein, R. von 344, 409, 469. Stejneger, L. 223. Steiracrangon 46, 47. Steirastoma 323. Steiria 523. Stelechopoda 82. Stelidota 264. Stelis 346, 366. Stemmatophora 537. Stemonyphantes 105. Stenagria 248. Stenaropterida 180, 181. Stenethrium 56. Stenichnus257. Stenini 248. Stenispa 334, 335. Stenobothrus 197, 549. Stenocara 289, 293. Stenocarus 298, 310. Stenocephalus 381. Stenocorynus 299, 310. Stenoderma n. 310. Stenodictyopterida 180. Stenolanguria 336. Stenomacra 434. Stenomacrus 58. Stenonia 120. Stenorhynchus 50. Stenoparia 388. Stenopelmatidae 199. Stenophthalmicus 384. Stenophylax 187. Stenopoda 386. Stenopsocus 174. Stenopsyche 184. Stenopterina 432. Stenopteryx 415, 417, 441. Stenoptrellus 323. Stenoscapha n. 293. Stenoscelis 551. Stenosidotus 254. Stenosmylus 185. Stenosphenus 316, 323. Stenotaenia n. 189. Stenotarsus 337. Stenothoe 53. Stenotrachelys 557. Stenotrupis 300, 310. Stenotus 389. Stenus 247-249, 254. Stepanoff, P. J. 193, 409. Stephanocleonus 299. Stephanoderes 312. Stephostethus 268. Sterculia 247, 254. Stereoborus 300, 311. Stereocephalus n. 248, 254. Stereocopa n. 537. Stereocorynes 298, 311. Stereoderus 300, 311. Stereonychus 298, 303, 311. Stericta 484, 533, 534. Sternocera 277. Sternodontus 379, 381. Sternoplus 275, 276, Sterospherus 550. Steropes 294. Steropus 244. Stethodes 328. Stethomela 329. Stethophyma 197. Stethorus n. 338, 339. Steudel, W., & E. Hofmann 470. Stevens, S. 470. Sthenarocera n. 202. Sthenaropoda n. 202. Sthenaropterida n. 200,203. Sthenarus 388, 389. Sthenias 323. Sthenoboea n. 289, 293. Stichopogon 427. Stictomyia n. 434. Stictonotus 554. Stictoptera 483, 522, 523, 529. Stierlin, Gustav 223. Stigmaeus 92. Register. 613 Stigmatium 287. Stigmatogaster 122, 123. Stigmen s. Respirationssy- stem. Stigmodera 277. Stigmus 363. Stilbia 483. Stilbopteryx 185. Stilbum 346. Stilicoides 254. Stilicus 248, 254. Stilochirus 88. Stilochotis 339. Stimmapparate s. Tonappa- rate. Stinkdrüsen s. Integument- gebilde. Stiphroneura n. 190. Stiphropus 97. Stiphrosoma 388. Stirogaster 386. Stizocera 323. Stolonis 239, 244. Stomatopoda 15-18, 23, 43, 59 Stom'is 238. Stomoxys 411, 437. Strabena491, 499. Strachia 380, 381. Strangalia 316, 323. Strategus 274. Stratiomyia 424, 425. Stratiomyidae 420, 424. Stratiomyina 424. Stratiomys 416, 424. Stratocleis 530. Stratonice 530. Strebla 441. Strecker, H. 470. Strephocladus n. 183. Strepsiptera. Anatomie, Ontogenie etc. 145 — Systematik 191. Stretch, R. H. 470. Strigamia 123. Strigoderma 274. Stringophorus 276. Stromatium 323. Strombocerus n. 349. Strongylium 289, 293. Strongylogaster 349. Strongylosoma 120. Strongylus 262, 264. Strophomorphus 297, 308, 311. Strophosomus 298, 308, 311. Struve, O. 470. Stuxberg, Anton 117. Stygnus 383. Stylocheiron 43, 44. Styloctetor 103. Stylodactylus 46. Stylogaster 432. Stylogastrinae 432. Styloniscus 57. Stylopidae 191. Stylosomus 326. Stymphalus 57, Styphlotychius 308. Styphrus 260, 261. Styx 507. Subcoccinella 337. Subrita 523. Subula 420, 425. Succinctae 497. Suctoria 442. Sumpigaster 438. Sunius 248, 254. Suphalasca 185, 189. Sutrea 330, 333. Sutton, H. C. 470. Svastra n. 366. Swammerdamia 540. Swinhoe, C. 470. Swinton, A. H. 470. Syagrus 328. Syblis 539. Sybropis n. 323. Sychnomerus n. 316, 324. Sycophaga 351. Sycoryctes n. 353. Syllegoptera 437. Syllythria 533, 534. Sylon 36. Symbiose s. Biocönotisches. Symbrenthia 491, 492, 502, 504, 505. Symitha 522, 523. Symmoca 485, 540. Symmorphus 364. Sympanotus n. 264-266. Sympathicus s. Nervensy- stem. Sympathische Färbnng. Arachnidae 76 — Diptera 161, 416 — Hymenoptera 345 — Lepidoptera 478, Raupen 139 — Mimonec- tes 30 — Orthoptera 194. Sympedius 311. Symphaedra 502, 505. Symphoromyia 426. Symphyla 124. Symphyletus 316. Sympiezus 353. Sympis 522, 524. Sympycna 1 72. Sympycnus 429. Synaema 79, 97. SjTiageles 98, 101. Synagris 363. Synarmostes 272. Syncaridae 59. Synchita 264, 266. Synchloe 507. Synechostictus 238. Synemosyna 101. Syneta 324, 325, 551, 552. Syngnatha 121. Synidotea 56. Synirmini 297. Synnada 299, 311. Synneuria n. 496, 533. Synommatus 300, 311, Synomus n. 299, 311. Syntomidae 476, 493, 497, 512. Syntomina 512. Syntomis 492, 493, 513. Syntomocera 438, 439. Syntomocerus 298, 311. Syntomoideae 512. Syntormon 429. Synuchus 238, Sypna 524, 529. Syrichius 299, 311. Syrichtus 489, 511. Syringophilus 85. SjT:itta 430, 431, Syromastes 381, Syrphidae 419, 420, 429. Syrphinae 430. Syrphis 415, Syrphus 429-431, 547, 556. Syrrhoe 53, Systema 552. Systematisches. Aptera (Thysanura) 165- 167 — Arachnidae 6, 82- 115 — Coleoptera 236-339 — Crustacea 34-60 — Diptera 419-442 — He- miptera 378-400 — Hexa- poda 139-141 — Hyme- noptera 347-367 — Lepi- doptera 475, 497-541 — Mallophaga 401-405 — Myriopoda 119-125 — Neuroptera 186-191 — Orthoptera 196-203 -- Pantopoda 7, 8 — Poeci- lopoda 61-64 — Pseudo- neuroptera 174-184 — Siphonaptera 442 — Strep- siptera 191 — Trilobitae 61-64. Eintheilung nach dem Thorax Hexapoda 139 — Werth des Characters der Metamorphose Hexapoda 138 Systena 330, 333, Systoechus 414, 417, 428, Syspasti 57. Syspastus n. 57, 58, Systole 491, 510, Tabanidae 420, 426. Tabanina 426. Tabanus 426. Tachidius 37. Tachina 415, 417, 439, 440, 556, Tachinina 420, 439. 614 Register. Tachinus 247. Tachista 429. Tachydromia 429. Tachygonus 311. Tachyporini248. Tachyporus 247, 255. Tachyptilia 485, 540. Tachyris 480, 494, 507. Tachys 239, 244. Tachj'tes 3«3. TachjTisa 248, 251, 255. Tacua 393. Tadius n. 299, 311. Taeniocampa 487, 489, 523, 525, 529, 558. Taeniotes 324. Taenosoma 255. Tagenia 293. Tagiades 491-494, 510, 511. Talanga n. 537. Talara 496, 516. Talitrus 29, 52. Talorchestia 52. Talpochares 529. Tanaecia 502. Tanagra 514. Tanaidae 16, 18, 54. Tanais 54. Tanamina 522. Tanygnathus 248, 249. Tanymecini 297. Tanymeeus 298, 311. Tanypezina 433. Tanypus 159, 422. Tapeina 324. Taphina n. 330, 334. Tapinocyba 103, 104. Tapinoma 360. Tapino(no)tus 298, 311. Tapinopa 105. Tapinostola 559. Tappes, G. 223. Tapponia n. 103. Taprobanes 171. Tara n. 101. Taragama 482, 518. Taramina n. 529. Taranucnus 105. Tarantulidae 111. Tarchius n. 300, 311. Tarentula 102. Tarentulina n. 102. Targioni-Tozzetti, Ad. 75, 374, 409. Taricanus 324. Tarle, ... de 470. Tarphiosoma 265, 266. Tarphius 264, 266. Tarsonemidae 83, 91. Tarsonemus 91. Tarsostenus 2S7. Tartaridae 111, 112. Taschenberg, E. L. 374. Tastorgane s. Sinnesorgane. Tatacantha 107, 108. Tatosoma 530, 533. Tauroceras 289. Taxonus 347. Taylor, G. W. 470. Teaspes 328. Technisches. Aphididae 375 — Aspidi- otus 155 — Caloptenus 194 — Crustacea 34 — Hexapoda 545 — Hyme- noptera 345 — Neurop- tera 184 — Pseudoneu- roptera 171 — Psyllidae 152. Aufzucht Aphididae 375, Apis 367, Coleoptera 225, 226, Lepidoptera 480, Eier Homarus 29 — Blei- chen von Chitin 7 — Conservirungs- u. Unter- suchungsmethoden Apis 150, Cj-pridae 21, Macro- toma 142, Eier Limulus 61, Ganglion opticum Aeschna 144, Imaginal- scheiben Musca 161, Mit- teldarm Decapoda 25, Herstellung histologischer Augenpräparate Musca 4, Unterscheidung der Keim- blätter durch Färbung Cyclops 20 — Vertilgungs- mittel u. Pflege Acarua 79, Coleoptera 550, Dip- tera 556, Hemiptera 554, Hexapoda (Allgemeines) 545-549, Hymenoptera553, Lepidoptera 557, Neurop- tera 549, Orthoptera 549, Pseudoneuroptera 549. Thysanoptera 550, Ty- phlodromus 78. Tectologisches s. Stamm. Tegenaria 78, 104. Teich, C. A. 470. Teinopalpus 509. Teinopyga 492, 514, 516. Telamona 554. Telaugia299, 311. Telea 482, 519, 557. Telegonini 6. Teleia 538, 540. Telenomus 353. Teleopsis 432. Telephanus 267. Telephorini 283. Telephorus 283-285, 552. Telesto 492, 494, 511. Telmatophilus 268. Telostylus 432. Telphusa 28, 51, 60. Telphusia n. 299, 311. Telphusidae 51. Telyphonidae 111. Telyphonus 79, 111, 113. Temenis 502. Temnochila 264. Temnoplectron 272. Temnorrhinus 302. Temnoschoita n. 297, 311. Temnostoma 430, 431. Temora 32, 37, 38. Temorella 37. Templetonidae 166. Tenaris494, 501. Tenaspis 281. Tenebrio 226, 289, 293, 552. Tenebrionidae 289. Tenodera 197. Tentakel s. Stamm. Tenthredinidae 347. Tenthredo 149, 347, 349. Tephlea 80, 96. Tephrina 533. Tephritis 432, 434. Tephrosia 479. Teracolus 480, 490, 491, 507- 509. Teras 484, 489, 548. Teraticum 52. Teratosoma n. 261. Terebrantia 204. Teredinae 511. Teredolaemus n. 265, 266. Teredus 264, 266. Teretrius 259-261. Teretrura n. 435. Terias 475, 479, 491, 495, 507-509. Terinos491, 501. Termes 113, 144, 171-173, 176, 179, 181, 202, 414, 549. Termitidae 141, 171-173, 176. Termitidium 181. Termitina 183. Tema 496. Tero, CK. 470. Territelariae 112. Tesba 247. Tesserodon 272. Tetanocera 433, 435. Tetanocerina 433. Tetanura 433. Tetens, Herrn. 129, 470. Tetracantha 108. Tetracera 112. Tetracis 484. Tetraclita 36. Tetraglenes 324. Tetragnatha 78, 79, 553, 555, 559. Tetragnathidae 93, 106. Tetragnathinae 106. Tetragonaspis n. 353. Tetralopha 558. Tetranemus 353. Tetraneura 397. Tetranychus 548. Register. 615 Tetraonyx 295, 296. Tetraprosopus 494. Tetrapus n. 353. Tetrarcha 236. Tetrasarus 324. Tetraspartus n. 300, 311. Tetrastichus 351, 353, 556. Tetrophthalmus n. 157, 405. Tetropius 324. Tetrops 316, 324. Tettigidae 198. Tettigometra 393. Tettigonia 390, 391, 554. Tettix 198. Teuchocnemi3 431. Teuchophorus 429. Teutana 105. Textrix 104. Thais 485, 509. Thalaina 517. Thalanes 238. Thalassinidae 48. Thalassius n. 102. Thalhammer, Janos 170. Thalpochares 523, 525. Thalycra 262. Thamnonoma 484, 530. Thamnotettix 390, 391. Thamnotrizon 199. Thanaos 511. Thanatophilus 257. Thanatus 97. Thaneroclerus 226. Tharops 279. Thaumastocheles 48, Thaumatoncus 103. Thaumatopeus 274. Thaumatopoea 517. Thaxter, . . . 471. Theates 297, 311, 491, 495, 506, 507. Theca 288. Thecla 557, 558. Thecophora 476. Thelacantha 107, 108. Thelaira 438, 439. Thelia 392, 554, 555. Themisto 54. Theoelia n. 299, 311. Theogama n. 299, 311. Theopea 330, 334. Theorema 496, 507. Thera477,480, 533. Therapha 381. Theraphosidae 93. Thereva 427. Therevidae 161, 427. Theria 437. Theridiidae 93, 105. Theridion 77, 79, 105, 106. Theridiosoma 105. Theridium 77, 105, 106, 555, 556. Therina 531. Therioplectes 426. Theristria 185, 188. Thermesia 524, 527. Thermesiidae 492. Thermesiina 522. Thestias 493. Thestor 481. Thiacides 482. Thiania 98. Thierry-Mieg, P. 471. Thinalraus 284. Thinasotia 494, 537. Thisusn. 299, 311. Tholagmus 380. Tholin, A. 223. Thomas, Friedrich 75, 410. Thomisidae 93, 97. Thomisus 97, 553, 559. Thomson, A. 471. Thomson, C. G. 223, 344. Thomson, G. M. 14. Thomsoniella 390. Thoracantha 353. Thoracostraca 16, 58, 59. Thorell, Tam. 75. Thoris 316. ThornewiU, Ch. F. 471. Thorwarth, ... 471. Thouless, H. J. 374. Thraschyroma n. 334. Threnodes 484. Thrinax n. 349. Thrincopyge 276, 277. Thripidae 203. Thrips 137, 204, 547, 550. Throscidae 279. Throscus 279. Thryallis 324. Thryophila 434, Thurau, F. 471. Thya 101. Thyas 483, 522, 524. Thyatira 483, 521. Thyene n. 98, 99, 101. Thyestetha 299. Thyiacites 298, 299, 311, 312. Thylacoptila n. 537. Thylax 175. Thymalus 264, 552. Thymaridina 512. Thymelicus 492, 511. Thyone 496. Thyreocephalus 247, 255. Thyreocoris 379, 355. Thyreosthenius 103. Thyridia 495, 498. ThyridinaSll. Thyridopteryx 163, 558. Thyroderus n. 264-266. Thyrogenus 311. Thysanoessa 43, 44, 56. Thysanopoda 25, 43-45. Tliysanopteral47, 378, 550. Thysannra s.Aptera, s. str. 166. Tibellus 97. Tibicen 393. Tichomiroff, A. 129. Tigellinus 103. Tigrioides 514. Tilloclytus n. 316, 324. Tillomorpha 324. TiUus 287. Timalphis n. 311. Timandra 531. Tiniarcha 329. Tinda 424. Tindall, G. 471. Tinea 163, 415, 475, 485, 489, 490, 539, 540, 548, 559. Tineae 474. Tineidae 478, 484, 486-490, 492-494, 511. Tineina 486. Tingididae 378, 379, 384. Tingis 384, 385, 547, 554, 555. Tinicephalus 388. Tinodes 187. Tinoliidae 492. Tinolius 483, 522. Tipanaea 535. Tipula 133, 423, 424, 547. Tipulidae 417, 419, 420,423. Tipulina 424. Tischeria 485, 538. Tiso 103. Titaea 480. Titanattus n. 101. Titanethes 57. Titanoeca 94, 95. Titanophasma n. 202. Tite, G.H.471. Tithanys 255. Tithorea 478, 495-499. Tithraustes n. 496, 516. Tituria 390. Titurius 102. Tityus 114. Tmarus 97. Tmesisternus 316, 324. Tmeticus 105. Todd, F. E. 170, 345,410. Tolype 558. Tomarus 268. Tomicus 312, 550-552. Tomlinson, J. W. 471. Tömösvary, Edm. 115, 117, 165, 410. Tomyris 328. Tonapparate u. Tonerzeu- guug. Acherontia 479 — Curcu- lionidae 225 — Cryptor- rhynchus 148 — Hemiptera 375 — Lepidoptera 476 — Orthoptera 193, 194 — Sphaerotherium 115 — Thecophora 476. 616 Register. Törnquist, S. L. 60. Tortricidae 474, 475, 478, 484, 486-490, 492-494, 511. Tortricodes 484. Tortricomorpha 539, 540. Tortrix 415, 475, 477, 479, 480, 484, 486, 488, 489, 526, 538, 546, 557, 558. Torymus 415. Tosena 393. Townsend, C. H. T. 193, 223. Toxicum 289, 293. Toxocampa 489, 529. Toxocampina 522. Toxocera 425. Toxocnemis 438. Toxoloma521. Toxoptera 396. Toxorrhina 417, 423. Toxotarsus 437. Toxotinus 324. Toxotropis 313. Toxotus 316, 322, 324. Tozeuma 45. Trabala491, 518. Trachea 488, 526. Tracheata im Allgemeinen 65-67. Tracheen s. Respirationssy- stem. Trachelas 96. Trachonitis 535. Trachorrhopalon 297, 311. Trachycarabus 241. Trachyderes 324. Trachynotus 89. Trachyphloeus 298, 312. Trachypholis 265. Tragidion 324. Tragopus 299. Tragosoma 316, 551. Trail, James W. H. 170, 374. Trama 396. Trapezites 491, 510. Trapezonotus 382, 384. Trechus 239, 240, 244. Tremex 553. Trepanes 238. Trepsichrois 493, 498. Triaenodes 187. Triarthron 257. Triaspis 356. Triballodes n. 259, 261. Triballus 259-261. Tribocbrysa 183. Tribolium 190, 552. Trichaltica 330, 334. Trichalus 280. Trichaptum n. 181. Trichaulus n. 353. Trichiosoma 347. Trichius 274, 276. Trichobaris 548, 555. Trichocera 411. Trichodactylus 69, 77, 79, 88. Trichodectes 401. 403. Trichodes 287. Trichodischia n. 440. Trichodura 438. Trichogena 438. Trichogramma 353. Tricholabiodes n. 360. Trichoncus 103. Trichoniscus 57, 58. Trichopetalum 120. Trichophorus 324. Trichophticus 437. Trichopoda 440. Trichoptera 141, 185. Trichopteridium 190. Trichopterygidae 259. Trichopteryx 259. Trichopticus 436. Trichosternus 245. Trichotheca 328. Trichoton 289, 293. Tricliona 328. Triclonus 427. Trictenotoma 288. Trictenotomidae 288. Trifurcula 488. Trigonia 524. Trigonidium 199, 200. Trigonodes 524. Trigonophora 4S3. Trigonopselaphus 248, 255. Trigonopsis 361. Trigonosoma 379-381. Trigonotylus 388, 389. Trilobitae 61-64. Trilocha 518. Trimen, Roland 76, 193,471, 544. Trimerotropis 197. Trineura 429. Trinoton 404. Triodites 414. Triodonta 431. Trionus n. 265, 266. Trioza 152, 155, 394, 555. Triphaenopsis 529. Triphleps 387. Triphosa 477, 495, 533. Triplax 336, 337. Tripopitys 288. Triprocris 512. Triptolemus n. 101. Triptotricha 426. Triphysa 476, 480, 485, 499. Tristania 267. Tristram, W. 471. Trisula 518. Triten. 101. Tritia 89. Tritoma 268, 336, 337. Tritomidea 337. Tritropis 53. Trixa 439. Trixagus 279. Trocharanis 258. Trochorrhopalus 300. Trochosa 102, 103. Trochosinan. 102, 103. Troctes 174. Trogliscus 285. Troglophilus 199. Trogophloeus 248, 255. Troglops 285, 286. Trogosita 264, 552. Trogositidae 264. Trogulidae 108. Trogulus 108. Trogus 358, 359. Trombidiidae 83, 93. Trombidium 83, 93. Tromodesia 438. Tropidia430, 431. Tropidochila 384, 385. Tropidoderus 197. Tropisternus 245, 246. Tropopterus 245. Trouessart, E. L. 76. Trouessart, E. L., & P.Meg- nin76. Troxochrus 103. Trybom, Filip 14, 76, 170, 410. Trycherus 337. Trypeta 413, 432. Trypetina 434. Tryphaena 547. Tryphocaria 316. Tryphosa 53. Tryponaeus 261. Trypoxylon 346. Tryptocera 415, 439. Trysibius 298. Trvxalidae 196, 197. Trvxalis 197. Tuberta 104. Tubitelariae 112. Tubulifera 204. Tuina 496, 514, 516. Tuinen, K. van 471. Turpin, ... 471. Tutt, J. 471. Tychanus 312. Tychea 396, 548, 555, 556> Tychiinae 299. Tychius 296, 298, 301, 310, 312. Tychiis 255, 256. Tylaspis n. 49. Tylauchenia 277. Tylides57. Tyloderma 312, 552. Tylodinae 299. Tylonotus3, 16, 552. Tylopsis 198. Tvlos 57, 58. Tylosis 324. Tymnes 328, Register. 617 Tyndaris 277. Typhaea 269. Typhlocyba 152, 153, 390, 391, 555. Typhlodromus 78. Typhlotanais 54. Typhochrestus 103. Typophorus 328. Tvrell, J. B. 223. Tyrinthia 324. Tyroglyphae 69. Tyroglyphidae 545. Tvroglyphina 88. Tyroglyphus 70, 77, 78, 88. Tyrtaeosus 299, 312. Tyspana n. 537. Udaiana n. 491, 507, 509. Uhler, P. K. 544. Ulidina 434. Ulivi, G. 345. Ulkeus n. 262. Uloboridae 95. Uloborus 95, 106. Ulonotus 266. Ulopa 390. Ulus 289, 293. Umidia 94. Unciola 52. Underwood, Lucien 117, 471. Undinopsis 37. Unelcus 316, 324. Uraba 521. Uramyia 437, 439. Uranidae 511. Uranüdae 493, 512. Urbanowicz, F. 14. Urda 58. Uroblaps 293. Urocerus 553. Uroctea 104. Urocteidae 104. Urodacus 80, 111. Urodus 513. Urophora 392, 412, 434, 547, 556. Uropoda 88, 89. Uropus 482. Urothoe 53. Uroxiphus 554. Yadäszfy, Eug. 544. Vadebra 506. Vallantin, H. 471. Valle, Antonio 14. Vanessa 164, 475-479, 481, 487-489, 491, 502, 503, 505, 557, 558. Vangel, E. 193, 471. Vapara 522. Variabilität s. Biologisches. Vaughan, H. 471. Velia 386. Vellejus 246. Vellica n. 255. Venables, J. 471. Venilia 531. Venus, E. 471. Verdauung s. Physiologi- sches. Verdauungssystem. Aspidiotus 155 — Cher- metidae 156 — Coccidae 156 — Euphausia 24 — Halarachne 69 — Hexa- poda 133, 134 — Macro- toma 142 — Mallophaga 157 — Psyllidae 153 — Serolis 30 — Trichodac- tylus 69. Afterlosigkeit Q Sphaero- . gyna 71 — Darm Chilo- poda 116, Chironomus 138, Glycogen Astacus 7, Gre- garinen Crustacea 19, Häutung u. Epithelerneu- erung Macrotoma 142, Histologie u. Physiologie Decapoda25; Hinterdarm Excremente Sphaerogyna 71; Mitteldarm Epithelre- generation Phronima 29, Ontogenetisches Decapoda 28, Phylloxera 157; Vor- derdarm Formica 149 ; Zell- u. Kerntheilung Arthro- poda 2 — Ontogenetisches Apis 150, Cyclops20, Gryl- lotalpa 147, Limulus 61- 63, Peripatus 66, Tricho- dactylus 70 — Histolyse Musca Ibü — Pharynx Larve Corethra 159 — Regeneration Musca 160, 161. Drüsen: Decapoda 26 — Leber Chitin Limulus 61, Glycogen Astacus 7, Cru- stacea 19 — Maxillardrü- sen Epeira 68 — Mittel- darmanhänge Amphipoda 29 — Speicheldrüsen Gal- leriaraupe 163, Hemiptera 152, Mallophaga 158, Psyl- lidae 154, Innervation He- xapoda 131 — Spinndrü- sen Galleriaraupe 163, Geo- philus 115, Hymenoptera u. Lepidoptera 149. Mund u. Mundwerk- zeuge: Formica 149 — Hexapoda 148, 149 — Lepidoptera 162, 475, Raupen 131 — Planoce- phalus 141 — Homologie Asellus 30 — Phylogene- tisches Arthropoda 5, He- xapoda 140, u. Morpho- logie Crustacea 15, 16 — Maxillarorgan Scutigera 115 — Palpen Function Coleoptera u. Orthoptera 131 — Rüssel Bombus 148, Hemiptera 152, Lepi- doptera 132 — Sinnesbor- sten Macrotoma 1 32, Sin- nesorgane der Mundhöhle u. Zunge Hymenoptera 130, 131 — Unterkiefer- papille Formica 148. S e c r e t e : Darm Hexapo- da 134 — Futtersaft Apis 151 — Magen Chemisches Periplaneta 145 — Spei- chel ist giftig 2 Sphaero- gyna 71, Chemisches Pe- riplaneta 145, Zuleitung zur Zunge Hymenoptera 130. Vererbung s. Phylogeneti- sches. Vermileo 411. Vermipsylla n. 442, Verlusia 381. Verrucidae 58. Verson, E. 129. Vertumnus 53, 274. Verwüstungen s. Nutzen u. Schaden. Vespa 3, 4, 130, 148, 346, 363, 364. Vesperus 546. Vespidae 363. Vesta 281, 283. Veth, H. J., & A. Brants 471. Veth, H. J., &J. T. Snelle- man 471. Viallanes, H. 129. Viciria 101. Victorina 495, 502. Vila 502. Vilius 387. Vine, George R. 14, Virachola 481. Virbia 496, 516. Virbius 16, 46, 47, 56, Vitessa 534, 537. Viv., ... 472. Viviana 438. Volucella 133, 411, 414,430. Volucellinae 430. Wa., .... 76. Wachsthum s. Biologisches. Wachtl, Fritz A. 410. Wagenen, G. H. van 223. Wagner, Nie. 7. Wailly, Alfr. 472. Wala n. 101. Walckenaera 103, 104. Walcott, Ch. Dol. 14, 61. 618 Register. Walker, F. A. 374, 472. Walker, J. J. 223, 472. Wallengren, H. D. J. 472. Walsingham, M. A. 410. Walsingham, Lord 472. Walter, Alfr. 14, 129. Wanderungen s. Biologi- sches. Ward, L. F. 374. Warren, W. 472. Wasmann, Erich 374. Waterhouse, Charles O. 193, 224, 374, 472. Waters, . . . , & G. D. Hülst 472. Webster, F. M. 76, 374, 544. Wedde, Herrn. 129. Weir, Jenner 170, 472. Weise, Julius 224. Wellmann, J. R. 472. Weny, Jänos 224, 374. Wenzel, H. W. 224. Werner, H. 544. Wesstropp, D. 472. Westwood, J. O. 472, 345. Westwood, J. O., & R. Mac Lachlan 472. Westwoodia 399. Weyding, A. 472. Weyenbergh, H. 170. Weyers, J. L. 224. Weymer, G. 472. Wh'eeler, F. D. 472. White, F. B. 472. White, ... 472. Whitehead, M. 544. Wliitfield, R. P. 76. Whittle, F. G. 472. Wideria 103. Wiedemannia 429, 439. Wielo-wiejski, H. v. 129. Wilding, R. 224. Wilke, A. 224. Wilkins, A. 224. Will, F. 129, 224, 345. Will, Ludw. 129. Willemoesia 48. Williams, H. ShalerOl. WUliams, J. T. 472. Williston, S. Wend. 410. Wilson, Th. 472. Wingelmüller, Karl 545. Winterschlaf s. Biologisches. Wintle, E. D. 473. Witlaczil, Eman. 129, 374. AVocke, M. F. 473. AVood, J. H. 473. Wood, Theodore 224. AVood, Th., & H. B. Pim 375. Wood, AV. M. 14. AVoodbridge, F. C. 473. AA'oodford, C. M. 473. Wood-Mason, J. 473. Woodward, H. 61. AA''oodwardia n. 180, 181. Wormaldia 187. AA^right, R. Ramsay 14. Wright, AV. H. 473. Wulp, F. M. van der 410. Wüstnei, AV. 345. Wutzdorf, . . . 473. Xanthia 483, 525. Xanthispa 334, 335. Xantho 50. Xanthochelus 312. Xanthochilus 382, 384. Xanthochlorus 429. Xanthogramma 429, 430. Xanthogramminae 430. Xantholinaria n. 248. Xantholinina 247, 248. Xantholinus 247, 248, 255. Xanthoptera 526. Xanthopygus 248, 255. Xanthotaenia 502. Xanthyris 514. Xenaspis 432. Xenica 500. Xenocheira 52. Xenofrea n. 316, 324. Xenomela 330. Xenoneura 179, 180. Xenoneuridae 179. Xenonychus 262. Xenopsocus n. 175, Xenorchestes 313. Xenos 191. Xenostrongylus 262. Xenostylus n. 316, 324. Xenotrupis 300, 312. Xeriodermus 307. Xeroscopa 494, 537. Xestobium 287, 551. Xestoleberis 59, 60. Xestonotus 245. Xestophanes 350. Xestula 537. Xiphopaeus 392. Xiphopenaeus 46. Xiphosura 64. Xixuthrus 324. Xoanodera 324. Xois481. Xolalges n 88. Xoloptes 84, 86-88. Xuthia 265, 266. Xychusa 299. Xyela 347. Xylastes 551. Xvleborus 312, 551. Xyletobius 287, 288. Xyleutes 551, 557. Xylina 525. Xyliniina 522. Xylinophorus n. 311, 312. Xylita 294. Xyliulus 119. Xylobanus 280. Xylobius 551. Xylocleptes 312. Xylocopa 133, 346, 365, 366. Xylolaemus 264. Xylopagurus 49. Xylopertha 288. Xylophagidae 420, 425. Xylophagus 425. Xylophasia 529. Xylophilus 279, 294. Xyloryctes 274. Xylota 430, 431. Xyloterus 551. Xylotinae 431. Xylotrechus 318, 324, 552. Xylotrupes 274. Xylurgops 551. Xylurgus 551. Xynenon 316. Xyphidria 553. Xysticus 79, 97, 555. Tetodesia 437. YUenus 101. Ypsipetes 479, 480. Ypsolophus 496, 539, 540. Ypthima 491, 493, 499, 500. Young, J. N. 473. A'ung, Emile 15. Zabriskie, J. L. 473. Zabrotes n. 314, 315. Zabrus 245, 552. Zacharias, Otto 15, 76. Zaitha 389. Zamodes 316. Zanclognatha 524. Zapater, B. 473. Zaraea 347. Zarrhipis 281, 283. Zebronia 537. Zegris 507. Zeilleria n. 181. Zelia 439. Zellenstructur s. Histologi- sches. Zenan. 299, 312. Zenochloris n. 316, 324. Zenodorus n. 99, 101. Zerene 163, 415, 484. Zerenidae 493. Zeritis491, 507. Zethes 481, 522, 524, 529. Zethus 363. Zetides 510. Zeugenia 299. Zeugomorpha 324. Zeuxia 438. Zeuzera 474, 521, 546. Ziegele, ... 410. Zilla 79, 106, 108. Zimiris 96. Zinckenia 534. Zittel, Karl A. 15, 67, 76, 117, 129. Zizera 507. Zodariidae 105. Zodarium 80, 105. Zodium 432. Zoea s. Ontogenetisches. Zonopterus 324. Zonosoma 415, 531. Zoobiae n. n. 441. Register. Zoographus 324. Zoomyia n. 441. Zopherus 293. Zophobas 289, 293. Zophodia 484, 496, 537. Zophodiopsis 535. Zora 96. Zoropsididae 94. Zoropsis 94, 96. Züge s. Biologisches. Zwitter s. Abnormitäten, Fortpflanzung u. Genital- organe. 619 Zygaena 415, 479, 482, 487 -489, 491, 513. Zygaenidae 475, 476, 482, 491, 492, 497, 512. Zygaenina 512. Zygaran. 299, 312. Zygina 390, 391. Zyginella n. 392. Zygoballus n. 101. Zygoneura 416. Zygonopus 120. Zygopinae 299. Zygops 312. Druck von Breitkopf «fc Härtel in Leipzig. Verzeichnis wichtiger Druckfehler. Pag. 24 Zeile 21 von unten statt Pascolinus lies Pescolinus. - 28 - 18 - - - Cambarius - Cambarus. - 37 - 8 - - - Echinosoma - Ectinosoma. - 40 - 1 - oben - Cytharella - Cytherella. 53 - 7 - unten - GamareUa - Gammarella. 55 - 3 - oben - Pasanthura - Paranthura. 64 - 9 - unten - Metopius - Metopias. - 183-185 - Myrmeleonidae- Myrmeleontidae. - 187 - 19 - - - Pinodes - Tinodes. 260 - 24 - - - Clamydopsis - Chlamydopsis. 264 - 1 - - - Tyroderus - Thyroderus. 267 - 23 - oben - Heetarthum - Hectartrum. 279 - 14 - - - Dierhagus - Dirrhages. 285 - 15 - - - Psiloderus - Psiloderes. 285 - 22 - - - Apolochrus - Apalochrus. 292 - 17 - - - Onymacris - Onymacrys. - 298 - 22 - - - Orobites - Orobitis. 298 - 25 - - - Pentarthum - Pentarthrum, - 299 - 23 - - - Euthieus - Euthycus. - 299 - 24 - - - Euthicodes - Euthycodes. 299 - 18 - unten - Immathia - Imatnia. - 299 - 12 - - - Ptatvtenes - Platytenes. - 300 - 4 - oben - Elathicus - Elatticus. 300 - 6 - - - Homalotragus - Homalotrogus. - 300 - 16 - - - Doliochotelus - Dolichotelus. - 300 - 11 - unten - Allaeotus - Allaeotes. - 301 - 23 - - - Apoderes - Apoderus. - 303 - 1 - oben - Chizogonia - Chirogonia. 303 - 3 - - - Chizozetes - Chirozetes. - 308 - 25 - unten - Calotropis - Caulotrypia. - 309 - 25 - - - Ptolicus - Ptolycus. - 316 - 22 - oben - Gnophalodes - Gnaphalodes. - 322 - 24 - - - Oxyglymma - Oxylymma. - 330 - 20 - - - Nisodra - Nisotra. - 332 - 10 - unten - Megistrops - Megistops. - 338 - 5 - - - Halycia - Halyzia. - 341 - 8 - - - Favre - Fabre. - 342 - 3 - oben - J - F. - 346 - 9 - - - Favre - Fabre. - 352 - 1 - unten - Namocerus - Nannocerus. _ 364 - 3 - - - Favre - Fabre. 379 - 4 - - - Leptosoma - Leprosoma. - 381 - 8 - - - Enoplos - Enoplops. _ 387 - 4 - - - Obligobiella - Oligobiella. - 411 - 8 - - - Myrmeleonidae- Myrmeleontidae. - 417 - 22 - oben - Orthorthapha - Orthorrhapha. - 424 - 18 - unten - Plecticus - Ptecticus. - 425 - 19 - oben - Plecticus - Ptecticus. - 430 - 7 - - - Cryspotoxum - Chrysotoxum. 434 - 4 u. 5 - unten - Hypochroa - Hypochra. - 465 - 1 - oben - W. - V. - 476 - 13 - - - Pieri - Pieris. - 481 - 5 - unten - Zethides - Zethes. - 481 - 1 - - - Hamel - Hamet. - 494 - 29 - oben - Crepidoscelis - Crepidosceles. - 496 - 12 - unten - Darra - Darna. - 507 _ 13 - - - Anthocaris - Anthocharis. -510- 5- - - Leuchochitonea- Leucochitonea. - 522 - 23 - oben - Symmitha - Symitha. 522 - 4 - unten - Sonagaria - Sonagara. 530 - 23 - - - Psaudocoremia- Pseudocoremia. MBU WHOl LIBRARY I ^"^