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PUBLIÉS SOUS SA DIRECTION
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Docteur és-sciences, chargé des Travaux zoologiques à bord

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Etudes d'anatomie comparée sur les Poissons provenant
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(Deuxième partie)

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le 30 Septembre 1923

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ACCOMPLIES SUR SON YACHT

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PRINCE SOUVERAIN DE MONACO

PUBLIÉS SOUS SA DIRECTION
AVEC LE CONCOURS DE

M. JULES RICHARD

Docteur ès-sciences, chargé des Travaux zoologiques à bord

FASCICULE LXV

Études d'anatomie comparée sur les Poissons provenant
des Campagnes scientifiques de S. A. S: le Prince de Monaco
(Deuxième partie)

Par Josrpu NUSBAUM-HILAROWICZ

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PAR

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PAR

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DEUXIÈME PARTIE:

CHAPITRE PREMIER

Structure des reins chez Gastrosiomus Bairdi (Gill et Ryder),
Argyropelecus hemigymnus (Cocco), Chauliodus Sloanei (Bloch)
et Gonostoma bathyphilum (Vaillant.

I. Les reins du Gastrostomus Bairdi {Gill et Ryder).

Les reins du Gastrostomus Baïrdi représentent un organe impair non seulement
par l’aspect extérieur, mais aussi par la structure interne.

On sait que les reins des téléostéens ont très souvent, dans certaines parties,
une structure impaire, mais même ici nous trouvons toujours des régions qui

* La première partie forme, sous le même titre, le fascicule Lvux de la présente publication. Elle a
paru en 1920 et est accompagnée de 12 planches en couleurs.
M. le Professeur Nusbaum-Hilarowicz est décédé en 1917. Le présent mémoire qui était complètement

achevé m'est parvenu en 1921 par les soins du fils du regretté et éminent naturaliste, M. le Professeur
T. Nusbaum-Hilarowicz.

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conservent leur structure paire. Dans la plupart des cas on trouve même dans
les parties impaires un sillon médian, qui divise le corps rénal en deux moitiés
latérales ; enfin partout sur des coupes transversales on remarque des traces
d’une structure paire.

Chez Salmo irideus par exemple (selon les recherches de B. Haller), les
reins sont formés, comme dans la plupart des cas, de trois parties : une antérieure
impaire, divisée par un sillon longitudinal en deux moitiés droite et gauche ; d’une
partie médiane paire et enfin d’une partie postérieure, impaire, mais divisée
aussi par un sillon médian en deux moitiés latérales. Chez Æsox lucius, d’après
le même auteur, les parties antérieure et médiane sont paires ; dans la partie
postérieure les reins droit et gauche sont liés l’un à l’autre.

Chez Gastrostomus au contraire,les reins représentent un organe complètement
impair dans toute sa longueur, ce qui est très rare, même exceptionnel.

Le rein du Gastrostomus (fig. 3, PI. n est formé de trois parties, qui ne sont
pas bien délimitées l’une de l’autre.

1° La partie antérieure est étroite, amincie en avant. Chez les jeunes individus
cette partie se trouve entre les ovaires droit et gauche.

2° La partie moyenne a un diamètre maximum. Au niveau de son quart
antérieur on voit un large conduit, qui se prolonge en arrière et vers la face
ventrale du corps, où il s'ouvre au dehors en arrière de l’anus. Chez l'individu jeune,
entre l'anus et l’orifice du conduit susnommé, on trouve un très petit orifice
d'oviducte, qui bientôt disparaît complètement. Le conduit susnommé représente
la vessie urinaire, car, comme nous le verrons plus bas, dans sa partie antérieure
souvrent les deux vrais conduits rénaux principaux (Nierengänge), qui courent
dans le corps rénal du côté ventral.

3° La partie postérieure du rein est étroite et située au côté ventral d’un
grand vaisseau, la veine caudale, qui va vers l'extrémité postérieure du corps.

Les vaisseaux veineux du rein sont les suivants. La veine médiane ventrale
impaire pénètre dans le corps rénal déjà dans sa partie antérieure ; elle est située
à la face ventrale et est visible sur les coupes transversales du rein jusqu’à la fin
de la partie moyenne du corps rénal. La grande veine caudale pénètre dans la
partie postérieure du rein ; à la face ventrale de cette veine se trouve l'extrémité la
plus postérieure du rein. Cette veine se ramifie en avant en deux branches, dont
la droite est généralement plus grande que la gauche. Cette ramification est visible
sur la fig. 7, PI. r et les deux branches se trouvent près de la face dorsale du corps
rénal.

La veine impaire ventrale répond très probablement à une des veines car-
dinales, dont l’une (le plus souvent la gauche) est, chez les téléostéens, faiblement
développée ou complètement réduite. Il est donc probable que la veine impaire du
Gastrostomus répond à la veine cardinale droite. Cette veine donne une grande
quantité de branches dorsales et latérales, sur les Coupes transversales on voit

—

souvent la disposition radiale de ces branches. Les deux branches de la veine
caudale se divisent aussi en un grand nombre de veines. Les dernières ramifi-
cations de ces veines communiquent avec les ramifications de la veine caudale par
une grande quantité de lacunes sanguines, que l’on voit partout entre les trabécules
du tissu lymphoïde.

La structure histologique du rein est partout la même.

Dans toutes les régions du corps rénal nous trouvons sur les coupes des cana-
licules rénaux, coupés dans diverses directions, d'un diamètre différent ; ces
canalicules sont plongés dans un tissu lymphoïde, qui forme des trabécules
irrégulières et entre ces dernières on voit partout des vaisseaux plus gros, des
capillaires et des lacunes sanguines.

Il arrive souvent que les canalicules rénaux ne se trouvent pas dans l’intérieur
du tissu lymphoïde des trabécules, mais dans l’intérieur des lacunes sanguines.
Le canalicule pénètre dans la lacune, passe par celle-ci, puis va par une trabécule,
pénètre de nouveau dans une lacune, en formant pendant ce chemin de nombreuses
anses et finissant en cul-de-sac.

Comme nous l'avons déjà dit, le tissu lymphoïde forme des trabécules qui
parcourent le corps rénal dans différentes directions et présentent partout, dans
les trois parties du rein, la même structure. La surface externe de cet organe est
enveloppée par une mince membrane de tissu conjonctif, très solide, renfermant
une certaine quantité de fibrilles et un petit nombre de noyaux arrondis.

Dans les trabécules mêmes on voit cinq sortes de cellules : 1° des cellules de
tissu conjonctif en petit nombre, fortement allongées ou faiblement ramifées
(Mg. 12 d, PL 1) ; 2° des cellules éosinophiles (fig. 12 a, PI. 1), arrondies ou un peu
irrégulières, amibiformes, très riches en granules éosinophiles, avec un noyau
rond, situé au centre ou près d’un pôle de la cellule. Assez fréquemment j'ai vu
des cellules éosinophiles avec deux noyaux. Plusieurs fois j'ai aussi trouvé des
mitoses dans ces cellules ; des cellules éosinophiles forment la principale partie
des éléments cellulaires de ce tissu ; 3° des cellules cyanophiles (fig. 12 b, PL.
avec un protoplasme principalement alvéolaire et des granules très fins ; ces
cellules se colorent par l'hématoxyline et l’éosine en bleu, tandis que le protoplasme
cellulaire éosinophile se colore en rouge, naturellement beaucoup plus faiblement
que les granules mêmes. Ces cellules ont un très grand noyau rond, avec un réseau
chromatique et un nucléole au centre. Dans plusieurs de ces cellules le noyau est
si grand que le protoplasme forme seulement une mince couche à sa périphérie ;
dans d’autres la quantité du protoplasme est plus grande. La forme de ces cellules
est irrégulière, arrondie, allongée ou polyédrique.

Il est difficile de dire quel est le rôle de ces dernières cellules. Je pense que
parmi les cellules du tissu Iymphoïde se trouvent très probablement aussi les
cellules « chromaffines », ce qui répondrait à un haut degré au développement
de la glande thyroïde et d’accumulations cellulaires de Langerhans dans le pancréas

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chez Gastrostomus, formations qui sont en corrélation avec les cellules « chrom-
affines » au point de vue de la théorie de la sécrétion interne. Nous savons par
exemple que la glande thyroïde et le système « chromaffine » s’aident récipro-
quement et qu'au contraire entre les cellules de Langerhans du pancréas et les
cellules « chromaffines » il y a un antagonisme de sorte que ces formations
s'entravent réciproquement (voir D' Michaud et Prof. Lüthje. Lehre von der inneren
Sekretion. Jahreskurse f. ärztliche Fortbildung. 1911).

Mais où se trouvent les cellules « chromaffines » chez Gastrosiomus ? L’organe
pararénal (Nebenniere), où on les trouve généralement, manque ici; nous pouvons
donc admettre qu'elles sont dispersées dans le tissu rénal même. Malheureusement
je n'avais pas un matériel frais, dont le tissu rénal pourrait être fixé dans les sels
acides de chrome, qui démontrent sans aucun doute l'existence des cellules
« chromaffines ». D'après Ciaccio (Arch. Ital. Anat. vol. 5, 1906) les granules
spécifiques des cellules chromaffines dans les tissus fixés dans le liquide de Bouin
et colorés par l’éosine, l’érythrosine ou par le bleu de toluidine (faible solution)
se colorent d’une manière spéciale. Je possédais un matériel fixé par le liquide
de Bouin et sur les préparations colorées par le bleu de toluidine, dans les cellules
mentionnées plus haut (munies de grands noyaux), j'ai trouvé des granules colorés
en violet. Les mêmes cellules colorées par l’érythrosine montrent des granules
rouges. Je peux donc admettre que ces cellules sont vraiment « chromaffines » ;
la grandeur de leur noyau et leur habitus semblent aussi prouver leur nature
chromaffne.

4° Le quatrième groupe de cellules qu'on trouve dans le tissu des trabécules
rénales renferme celles dont le protoplasme se colore par l’hématoxyline et
l’éosine plutôt en bleu et dont les noyaux, ronds ou ovoïdes renfermant un réticule
chromatique très fin (fig. 12 c, PI. 1), sont d’une grandeur énorme. Le diamètre
du noyau est aussi grand que celui d’une cellule éosinophile. Le nombre de ces
cellules est petit; elles sont ici et là accumulées dans le tissu trabéculaire.

5° Enfin nous distinguons les cellules qui par leur forme et leur grandeur
répondent complètement aux cellules éosinophiles et dont le protoplasme se colore
par l'hématoxyline et l’éosine plutôt en rouge ; le noyau est arrondi ou un peu
allongé (fig. 12 e, PI. 1). Elles diffèrent des cellules éosinophiles par l'absence
complète des granules éosinophiles. Je suis sûr que ces cellules représentent
des érythroblastes, car j'ai trouvé diverses formes de passage entre elles et les
érythrocytes. J'ai trouvé les érythroblastes (et ausssi les cellules éosinophiles)
non seulement dans le tissu des trabécules rénales, mais aussi en nombre assez
grand, dans l’intérieur de lacunes sanguines. Ici il y avait souvent des érythroblastes
non modifiés munis de noyaux arrondis ; des érythroblastes allongés, d'une forme
ovale, avec un noyau ovoide et un protoplasme plus ou moins alvéolaire ; enfin
des cellules ayant le même aspect, mais dont le noyau se colorait plus intensivement
et dont le protoplasme se colorait par léosine en rouge de cuivre comme les

er
corpuscules rouges sanguins typiques. Ainsi nous avons trouvé plusieurs paases
transitoires entre les érythroblastes et les érythrocytes ; nous pouvons donc
conclure que le rein du Gastrostomus, spécialement le tissu iymphoïde de celui-ci,
joue un rôle important dans la production des érythrocytes.

Je dois encore ajouter que d’après mes observations 1l est probable que non
seulement les érythroblastes typiques, mais aussi les cellules éosinophiles granu-
leuses participent à la formation des érythrocytes. J'ai trouvé dans les lacunes
sanguines des cellules éosinophiles renfermant un grand nombre de granules
éosinophiles et des cellules avec un nombre plus petit de ces derniers. Je pense
donc que ces cellules peuvent se transformer en érythroblastes quand elles perdent
complètement leurs granules. J'ai vu aussi certaines formes de passage entre Îles
cellules éosinophiles contenant beaucoup de granules et les cellules qui avaient
l'aspect d'érythrocytes allongés, ovoïdes, renfermant un petit nombre de granules.
Il est donc probable que quoique généralement les érythrocytes soient un produit
de transformation d’érythroblastes typiques, certaines cellules éosinophiles peuvent
former des érythroblastes en perdant leurs granules et donner ainsi indirectement
naissance aux érythrocytes.

Quant aux canalicules rénaux, les relations sont les suivantes : le grand canal
commun, c’est-à-dire la vessie urinaire, commence dès la partie moyenne du
rein et est très vaste; dans sa partie antérieure il est réuni au corps rénal à l’aide
d'un tissu conjonctif fibrillaire ; plus en arrière il devient libre. Voici la structure
de ses parois. Il est tapissé par une couche d’épithélium cylindrique, dont les
cellules sont très petites en comparaison avec celles des deux canaux (conduits
rénaux) qui s'ouvrent dans la vessie ; les noyaux ovoïdes se trouvent au centre
des cellules. En dehors de cet épithélium on voit la musculature, en général
faiblement développée, où on distingue une couche externe de fibres musculaires
lisses, circulaires, mince, non interrompue et une couche interne de fibres
musculaires lisses longitudinales, interrompue ; les faisceaux de cette dernière
sont éloignés l’un de l’autre et séparés par un tissu conjonctif fibrillaire (fig. 5, 9,
PI.1). En dehors de la couche circulaire on voit parfois ici et là des faisceaux
longitudinaux isolés. Sur les coupes transversales par la vessie, dans les régions
où se trouvent les faisceaux longitudinaux internes, on remarque de petites
éminences dans la surface interne de la paroi.

En dehors de la musculature se trouve une couche très épaisse de tissu
conjonctif fibrillaire lâche.

Dans la partie la plus antérieure de la vessie urinaire, latéralement à droite
et à gauche s'ouvrent les deux principaux conduits rénaux. D'abord chaque conduit
s'étend dans une direction transversale, perpendiculaire à (fig. 11, PI. 1) l’axe
longitudinal de la vessie urinaire ; puis il prend une direction parallèle à la vessie,
c’est-à-dire longitudinale. Au commencement chaque conduit se trouve dans
un tissu conjonctif qui entoure la vessie, en dehors du corps rénal (fig. 9, c.r.p.,

ns À 2e

PI. 1); puis il s'enfonce dans le tissu du rein même, placé ici latéralement près
de sa face ventrale. Chaque conduit finit à peu près aux deux tiers de la partie
antérieure du rein.

Les deux conduits forment un grand nombre de courbures et d’anses ; c’est
pourquoi on les voit presque partout, sur les coupes transversales par le rein,
coupées plusieurs fois (fig. 0, PI.1). Sur la fig. 11 (PL. 1) on voit l'orifice externe
du conduit rénal principal, c'est-à-dire son embouchure dans la vessie. L’épithélium
de la vessie diffère de celui du conduit ; là les cellules épithéliales sont beaucoup
plus petites, presque deux fois, que dans le conduit, ce qu'on peut constater
en comparant les fig. 2 et 5 (PI. 1), faites sous le même grossissement. La seconde
différence consiste en ce que les noyaux dans l'épithélium de la vessie sont plus
allongés et situés presque au centre de la cellule, tandis que dans le conduit ils
sont moins allongés et placés beaucoup plus haut. Enfin les cellules du conduit,
à leurs faces libres, sont munies d'une bordure homogène et, dans la partie
basale de la cellule, au-dessus du noyau, le protoplasme montre une structure
fibrillaire (fig. 10, PI. 1), qu'on ne trouve jamais dans l’épithélium de la vessie.

Dans chaque conduit rénal principal, droit et gauche, s'ouvrent plusieurs
canalicules rénaux primaires, dont la position, comme le montre une série de
coupes, n'est pas métamérique, mais irrégulière ; le métamérisme disparaît ici
complètement. Ces canalicules sont formés d’un épithélium plus bas que celui du
conduit principal. On voit des formes de passage entre l'épithélium cylindrique
(fig. 4, PL ») et cubique (fig. 8 a, PI. 1), puis entre le cubique et celui qui est plus
ou moins aplati (fig. 8 c, d, PI. 1). Les noyaux ovoïdes dans l'épithélium cylindrique
acquièrent une forme ronde et aplatie, mais partout ils sont situés près de la face
interne de la cellule, ce qu’on ne voit pas dans l'épithélium fortemement aplati.
La figure 10, PI. 1, représente une région où un canalicule primaire sort d’un
conduit principal ; la figure 8 a, c, d, Pl. 1, montre diverses formes d’un épithélium
dans les canalicules primaires.

Les canalicules forment un grand nombre de courbures et se divisent dichoto-
miquement ; c'est pourquoi sur des coupes par le corps rénal on voit un très grand
nombre de canalicules coupés dans toutes les directions. La fig. 4, Pl. 1, nous
donne quelques images de cette division dichotomique des canalicules. Nous
pouvons nous persuader d’une manière sûre qu'ils se divisent ainsi, en comparant
les coupes d’une même série.

Dans les canalicules tapissés par un épithélium cubique ou cylindrique bas,
j'ai trouvé çà et là des cellules solitaires très grandes, avec un grand noyau rond,
un protoplasme clair et munies à leur surface libre d'une bordure (fig. 1, PI. n.
Je ne peux pas dire quel est le rôle de ces énormes cellules.

L'épithélium des canalicules primaires est couvert en dehors par une couche
très mince de tissu conjonctif; partout on voit seulement une couche unique de
cellules allongées, aplaties de ce tissu (fig. 8 a, fig. 1, PL. ©».

ee

En se ramifiant dichotomiquement, les canalicules changent non seulement
leur structure, mais aussi leur diamètre. D'abord plus larges où ils sont tapissés
par l'épithélium cubique ou aplati, ils deviennent ensuite plus étroits et les parties
terminales, c'est-à-dire les plus internes des canalicules, sont tapissées par un
épithélium haut, cylindrique (fig. 8 b, c, PL. 1), dont les régions cellulaires basales
ont déjà une structure fibrillaire distincte, tandis que les parties apicales, où se
trouvent les noyaux, montrent une structure alvéolaire. Ici les cellules sont plus
larges à leurs bases et plus étroites à leurs parties apicales, où la face libre est
munie d’une bordure (fig. 8 e, Pl. 1), La cavité d’un tel canalicule à paroi épaisse
est très petite ; on peut observer des passages entre les parties tapissées par un
épithélium plus bas et les parties munies d’un épithélium très haut (fig. 8 b, e, PI. n.
Les parties finales des canalicules avec un épithélium haut et cylindrique deviennent
de plus en plus étroites et leur cavité disparaît complètement ; le canalicule se
termine en cul-de-sac.

Il est très intéressant que jamais je n'ai trouvé des glomérules de Malpighi
dans le rein du Gastrostomus, tandis que je les ai trouvés chez d’autres poissons de
grande profondeur et certains auteurs les décrivent chez plusieurs poissons
téléostéens (Haller). Les glomérules de Malpighi manquent complètement chez le
Gastrostomus et je pense que le fort développement du tissu lymphoïde (pseudo-
lymphoïde) en est la cause. Les canalicules rénaux, notamment leurs branches
tapissées par un épithélium aplati, sont très souvent plongés, comme je l’ai déjà
dit, dans des lacunes sanguines ; en passant par celles-ci, ces branches sont tout
autour lavées par le sang, ce que nous voyons par exemple sur la fig. 7 c, ou sur
la fig. 12, Pl. 1; cela facilite la pénétration des produits excrétoires du sang dans
le canalicule.

Je dois encore décrire une particularité de la structure du rein chez Gastros-
iomus. Notamment dans le tissu lymphoïde des trabécules j'ai trouvé 3-4 formations
dont le rôle morphologique et physiologique est pour moi complètement inconnu.
Il est possible qu'elles représentent des restes modifiés de néphrostomes embryon-
naires dont elles sont probablement les produits de division, maïs je ne possède
aucune preuve au profit de cette hypothèse. |

Ces formations, au nombre de 4 dans le rein d’un exemplaire et au nombre
de 3 dans le rein d’un autre, se trouvent dans différents endroits du corps rénal,
dans ses parties latérales plus près de la face ventrale ou dans la partie centrale
plus près de la face dorsale, entre deux grands troncs de la veine caudale
(fig. 6, PL. 1).

Voici la structure de ces formations : généralement il y a 5 (dans un cas 6)
courts tubes épithéliaux, qui à l’une de leurs extrémités — appellons la antérieure
— jnissent en cul-de-sac et qui sont tapissés d’une couche d’épithélium haut,
cylindrique. Un de ces tubes se trouve au centre et les 4 ou 5 autres sont placés
autour de ce tube central; vers l’autre extrémité, que nous nommons postérieure,

2 N.

ces tubes courts s'unissent et recoivent une paroi externe commune ; la cavité
commune est divisée par les cloisons longitudinales placées radialement (fig. 14, 15,
PI. »). Ces cloisons représentent des restes de parois internes de tubes, qui étaient
dirigées vers le tube central. Enfin postérieurement se forme un tube basal unique,
dans lequel les cloisons sont complètement réduites ainsi que la cavité interne,
qui se remplit de cellules arrondies. Puis le tube unique, transformé en une tige
solide (fig. 13, PI. 1) cellulaire basale se réduit de plus en plus et disparaît
complètement dans le tissu lymphoïde. Les cellules épithéliales qui forment
la paroi des tubes sont très caractéristiques. Tandis que dans l’épithélium des
canalicules rénaux les noyaux sont toujours situés près du sommet de la cellule,
ici ils sont placés à la base de la cellule (fig. 8, f. ; fig. 13-17, PL. 1), ils sont ronds
ou très peu allongés, riches en chromatine et leur protoplasme renferme un très
grand nombre de fins granules éosinophiles. Les cellules rondes, situées au centre
de la solide tige postérieure (fig. 13, PI. 1) ont aussi un protoplasme riche en granules
éosinophiles.

Les formations que je viens de décrire se colorent généralement d’une manière
plus intense que les canalicules rénaux et c'est pourquoi on peut les bien distinguer
sur les coupes, même sous un assez faible grossissement, sur des préparations
colorées par l’hématoxyline et l'éosine ou par l'hématoxyline au fer de Heidenhain.

Il. Les reins d'Argyropelecus hemigymnus /Cocco).

Les reins d’Argyropelecus hemigymnus sont pairs ; seulement dans leurs
parties postérieures ils sont impairs. Dans chaque rein on distingue : 1° Une région
antérieure, paire, en forme de lobes allongés dans une direction oblique ventro-
dorsale (fg.3, PI. n) et fixés à l’aide de plusieurs ligaments de tissu conjonctif
à loccipital basal du cräne et au corps de la première vertèbre. 2° Une région
médiane, allongée, paire, sur les coupes transversales, comme la région antérieure,
triangulaire, plus épaisse dans ses parties proximales et plus mince dans ses parties
latérales (fig. 12, PI. n). Cette région rénale s’amincit encore plus loin et passe
à une région impaire (8), postérieure, allongée, sur les coupes transversales
aussi triangulaire, dont la base est dirigée vers le ventre du corps et le sommet
vers le dos (fig. 4, PI. n). Dans la partie antérieure de cette région on trouve
encore deux conduits rénaux principaux, qui quittent en arrière le tissu rénal
et s'unissent en un canal commun assez étroit, impair, qui correspond à la vessie
urinaire. Ce canal se dirige latéralement près de l'ovaire, vers la face ventrale
du corps où il s'ouvre au dehors en arrière de l'anus, tandis que la partie caudale
du rein s'étend encore plus loin, où elle s’amincit à son bout postérieur (fig. 2, PI. Il).

La structure histologique du rein d'Argyropelecus diffère beaucoup de celle
du Gastrostomus. .

Sa région antérieure, qu'on peut nommer lobe céphalique est formée d’une

partie interne, c’est-à-dire médiane et d’une partie externe ou latérale. La partie
médiane est formée de cellules de nature épithéliale très caractéristique (lg. 3 et 2,
PI. 1). Notamment, chaque cellule est hexagonale ou pentagonale, assez grande
(le plus grand diamètre a 30-45 u, le diamètre du noyau a environ 7.5u); presque
partout entre les cellules voisines on voit des fentes très étroites avec les capillaires
sanguins très délicats, tapissés par un endothélium. Sur les préparations où ces
capillaires sont remplis d’érythrocytes, on peut voir comment chacune des cellules
est entourée de tous côtés par ces capillaires (fig. 2, Pl. n). Çà et là les cellules
voisines se touchent mutuellement, mais je pense que dans l’état naturel les
capillaires se trouvent partout entre les cellules. Aïnsi les capillaires forment un
réseau polygonal, mais cà et là les cellules mêmes forment des rangs longitudinaux
et alors les capillaires forment aussi des anses longitudinales. Quant aux cellules
épithéliales, elles contiennent un protoplasme granuleux et ces granulations sont
bien visibles même sous un faible grossissement. Elles se colorent en rouge par
l'éosine et en jaune-orange par l'orange. À leur centre se trouve un noyau rond avec
la chromatine accumulée principalement à la périphérie, présentant aussi quelques
granulations internes et un réseau très faiblement développé.

Dans la partie latérale du lobe céphalique on voit des cellules beaucoup
plus petites (d'un diamètre de 5 à 12.5 w), polygonales, arrondies ou ovoïdes
avec un protoplasme dépourvu de granulations, qui se colore en plus foncé et
montre ici une structure alvéolaire ou plus homogène. Les noyaux de ces cellules
sont un peu plus grands que ceux des grandes cellules granuleuses et c'est
pourquoi ces cellules diffèrent très distinctement des cellules granuleuses de la
partie interne. Entre ces cellules on ne voit pas de capillaires mais un petit
nombre de cellules allongées, fusiformes, de tissu conjonctif. Entre les cellules
périphériques et médianes on trouve des formes en partie de passage ; ce sont
des cellules plus petites que les cellules granuleuses typiques, mais d'une même
structure (fig. 1 et 3, PI. n).

Dans la partie latérale de la région antérieure du rein, entre les cellules
nommées ci-dessus, on remarque un petit nombre de canalicules rénaux, au
voisinage d'un grand vaisseau veineux ; ils s’enfoncent dans la lumière de ce
dernier (fig. 3, PI. 1) étant presque de tous côtés lavés par son sang. Ils s’enfoncent
naturellement avec l’endothélium du vaisseau même.

L’extrémité la plus antérieure de la partie céphalique (antérieure) du rein
est formée seulement de grandes cellules épithéliales granuleuses et de capillaires
sanguins, comme nous le voyons sur la fig. 3, PI. 11 à droite (coupe transversale
un peu oblique).

Dans la région antérieure des reins il n'y a pas du tout de corpuscules de
Malpighi.

La région médiane des reins est aussi, comme nous le savons, paire. Le rein
a ici la forme d’un triangle ; les bases de ces triangles sont dirigées l’une vers

l’autre, c'est-à-dire dans la direction centrale, les sommets dans la direction
périphérique. Comme dans la région céphalique du rein, on distingue ici de même
deux parties : une médiane et une latérale (fig. 12, PL. n.

La partie médiane est formée de cellules épithéliales polygonales, avec
de nombreux capillaires sanguins entre celles-ci ; nous voyons donc ici la même
structure que dans la partie interne de la région céphalique du rein. Les capillaires
sont ici encore plus développés que là et forment un réseau polygonal très régulier,
qui entoure toutes les cellules sans exception.

La partie latérale (fig. 12 à droite, PI. n) est beaucoup plus petite. Nous voyons
ici ces petites cellules qui correspondent aux mêmes cellules de la région céphalique.
Elles se colorent par l’hématoxyline et l’éosine en bleu, tandis que les grandes
cellules polygonales de la partie médiane se colorent en rouge. Sur les coupes
On voit ici plusieurs canalicules rénaux, un grand vaisseau veineux au centre
et plusieurs vaisseaux plus petits. Ici aussi nous trouvons en nombre restreint
les glomérules de Malpighi au sommet du triangle. Sous un grossissement plus
fort la fig. 13, PI. 1 représente le sommet d'un triangle rénal avec un glomérule
de Malpighi. Il semble que le nombre de ces glomérules ne dépasse pas 2 à 3
dans la région médiane de chaque rein.

La région postérieure du rein, comme nous l'avons déjà dit, est impaire et
a la forme d’un triangle, dont la base est dirigée vers la face ventrale et le sommet
vers la face dorsale du corps (fig. 4, PI. n). Les grandes cellules polygonales
manquent ici; On y voit seulement des petites cellules cyanophiles, des canalicules
rénaux et des glomérules de Malpighi. Ces derniers, aussi en nombre restreint,
se trouvent au sommet du triangle rénal (dorsalement) et à sa base (latéralement).
Il semble que leur nombre dans le rang dorsal (impair) et dans les rangs latéraux
(pairs) est de même 2 à 3 dans chaque rang. Mais, ce qui est très curieux, plusieurs
de ces glomérules se trouvent en état de réduction ; leurs cellules épithéliales
forment des cordons solides caractéristiques, entre lesquels on voit une abondance
de capillaires sanguins. Ces glomérules de Malpighi réduits se trouvent dans le
rang dorsal comme dans les rangs pairs latéraux.

La fig. 11 nous donne l'image d’un tel glomérule de Malpighi réduit. La coupe
transversale montre que ce corpuscule est formé de plusieurs rangs (cordons) de
cellules cubiques ou polygonales, d'un diamètre de 7.5 jusqu'à 10, avec un proto-
plasme finement alvéolaire et un noyau arrondi. Très souvent celui-ci est lobé ou
au lieu d’un noyau unique on trouve 3-4 noyaux plus petits comme produits de sa
fragmentation. La formation totale est entourée par une couche d’épithélium très
aplati, qui représente peut-être la couche externe épithéliale de la capsule de
Bowman, cnmme nous le voyons sur le glomérule de Malpighi normal (fig. 13,
PI. n). Sur la fig. 4 x, PL. 11 nous voyons au sommet du rein une telle formation
réduite et à côté un glomérule de Malpighi bien développé. J'ai observé souvent
que les glomérules normaux et réduits apparaissent alternativement dans le même
rang.

ee —

Quant aux canalicules rénaux dans le rein d’Argyropelecus les relations sont les
suivantes : au niveau du tiers antérieur de la région postérieure impaire du rein
commence un conduit quise dirige à côté de l'ovaire vers la face ventrale du corps
et s'ouvre au dehors, en arrière de l'anus. Ce conduit doit être regardé comme la
vessie urinaire. Il est assez étroit, cylindrique, aux parois formées d’une couche
d'épithélium cylindrique, dont le protoplasme est finement strié ; les noyaux sont
cylindriques, placés au centre de la cellule avec le bord libre muni d’une bordure
striée (fig. 18, 19, PI. x).

En dehors de l’épithélium se trouve une mince couche de fibres musculaires
lisses ; dans certains endroits il y a aussi une couche de fibres circulaires internes
et de fibres longitudinales externes, qui forment des faisceaux isolés ; dans d’autres
lieux on voit seulement des fibres longitudinales sans aucune trace de fbres
circulaires.

Au commencement de la vessie urinaire s'ouvrent dans cet organe deux conduits
rénaux principaux ; dans leurs parties les plus postérieures ils courent librement
au-dessous du rein, mais plus en avant ils sont plongés dans le tissu même de ce
dernier (fig. 17 d.p, PI. n).

Les conduits principaux sont visibles dans la région postérieure du rein et dans
la région médiane paire (fig. 4 d.p; fig. 12 et 17 d.p, PI. nu). Dans la région
céphalique on n’en distingue déjà rien. Dans le conduit principal s'ouvrent les
canalicules rénaux primaires en nombre réduit, dont le métamérisme disparaît
presque totalement.

Chaque canalicule forme beaucoup d’anses et se ramifie enfin dichotomiquement
en deux canalicules secondaires qui donnent aussi beaucoup d’anses et se divisent
à leur tour en deux canalicules de troisième ordre, très étroits. Ceux-ci se prolongent
en capsules de Bowman entourant les glomérules de Malpighi ou finissent sous
forme de corpuscules réduits ou enfin se terminent en cul-de-sac.

La structure des canalicules rénaux est différente dans diverses régions.

La paroi du conduit principal est formée d’une couche d’épithélium cylindrique
(le diamètre long de la cellule a environ 17,5 w) ; le noyau arrondi, pauvre en
chromatine sous forme d’un faible réseau, se trouve près de la surface libre
cellulaire, où le protoplasme présente une bordure striée. Dans le protoplasme
on remarque des stries longitudinales et parallèles l’une à l’autre, formées par
des rangées de granules (fig. 6, PI. m).

Les canalicules primaires ont la même structure. Dans les canalicules
secondaires en général 1l n'y a pas de limites entre les cellules (fig. 7 et 8, PI. ”)
ou ces limites sont très faiblement marquées ; les noyaux sont ronds et aussi
pauvres en chromatine ; le protoplasme, renfermant ordinairement des rangs de
granules, quoique cà et là finement granuleux, ne renferme pas de stries
granuleuses. | |

Les canalicules les plus étroits (qu'on peut nommer de troisième ordre) sont

a
formés de cellules cubiques (leur hauteur est d'environ 1ou), munies à leurs surfaces
libres de brosses très longues, ayant l'aspect de cils ; le protoplasme montre des
stries longitudinales formées par des granules allongés, représentant des « mito-
chondries » typiques. Ici ces granules se colorent, comme dans d’autres canalicules,
par l'éosine en rouge et par l'orange en jaune-orange ; les noyaux de ces cellules
sont grands, ronds, avec un réseau de chromatine, ils sont situés près de la surface
libre (fig. 5, 9, 10, PI. x). Très souvent les limites entre ces cellules ne sont pas bien
visibles.

Dans la capsule de Bowman la paroi externe est formée d'une couche d’épi-
thélium très aplati; la paroi interne enveloppe directement les capillaires du
glomérule de Malpighi, dont les noyaux arrondis d'épithélium aplati sont beaucoup
plus grands que dans la paroi externe. Cette différence entre les noyaux des deux
parois est représentée sur la fig. 10, Pl: n(e, noyaux de la paroi externe ; z, noyaux
de la paroi interne de la capsule).

Dans la région postérieure impaire du rein, en arrière du lieu où commence
la vessie urinaire, les deux conduits rénaux principaux se prolongent près de la
surface ventrale.Dorsalement s'ouvrent dans ceux-ci plusieurs canalicules primaires,
qui sans se diviser forment un certain nombre d’anses, conservent partout la même
structure (comme dans la région plus antérieure du rein) et finissent en cul-de-sac.
Les canalicules étroits et les glomérules de Malpighi manquent ici.

Entre les canalicules rénaux on voit ici de petites cellules cyanophiles et
un grand nombre de vaisseaux d’un diamètre différent et de capillaires (fig. 17, PL. n).

HT. Les reins du Chauliodus Sloanei {Bloch}.

Chez Chauliodus Sloanei les reins sont organisés tout à fait autrement que
chez les deux formes précédentes.

Is sont ici très longs (fig. 1, PI. m) et on peut y distinguer trois régions :
antérieure, médiane et postérieure. La région antérieure ou céphalique, la plus
courte, est amincie en avant et munie en arrière d’un renflement du côté interne
(proximal). La région médiane est la plus longue. Ces deux régions sont paires,
tandis que la postérieure semble impaire et s'ouvre en dehors.Leurs trois longueurs
sont dans les rapports de tr : 6: 3.5.

Entre les parties paires se trouve le grand sympathique dans lequel j'ai
compté 23 paires de ganglions, dont les 15-16 antérieurs sont plus rapprochés
mutuellement que les postérieurs.

C'est seulement dans la région antérieure du rein qu'on trouve 3-4 grands
glomérules de Malpighi et les canalicules rénaux très bien développés. Dans les
régions médiane et postérieure il n'y a point de glomérules de Malpighi et les
canalicules sont réduits à un haut degré.

Partout on trouve dans le rein un tissu cellulaire assez semblable à celui qui

a été signalé dans le rein chez Gastrostomus et une grande quantité de vaisseaux
capillaires.

Je décris avant tout la région postérieure du rein, qui ayant l’aspect d’une
formation impaire est en réalité formée de deux moitiés : droite et gauche, unies
par un grand vaisseau impair veineux. Ce vaisseau se forme par l'union de deux
veines antérieures, situées dorsalement et proximalement en liaison avec les
reins droit et gauche.

La fig. 22, PI. x présente une coupe transversale par la région postérieure
du rein ; au centre nous voyons la grande veine ; à droite et à gauche de celle-ci
les corps rénaux.

Sur la fig. 23, PI. 11 nous voyons une coupe transversale par la région médiane
du rein droit ; la grande veine est visible au côté dorsal (et proximal) du corps
rénal. Je pense que ces deux grandes veines répondent aux veines cardinales
droite et gauche chez d’autres poissons et qu'ici ces deux veines s'unissent et
forment en arrière une veine impaire.

Dans les moitiés droite et gauche de la région postérieure du rein court
un long canal principal, très vaste ; c’est le conduit principal, qui émet de tous
côtés, c'est-à-dire dorsalement, ventralement et latéralement un grand nombre
de canalicules très étroits, souvent divisés en deux, plus rarement en trois courtes
branches finissant en cul-de-sac. On voit ces canalicules sur la fig. 22, PI. n. Nous
trouvons les mêmes relations dans la région médiane du rein (fig. 23, Pl. n). Ces
canalicules ont la même structure histologique que le conduit principal. Partout
nous voyons une couche d’épithélium, pour ainsi dire plus cubique que cylindrique,
avec un protoplasme plus ou moins homogène, avec un grand noyau rond, pauvre
en chromatine, au centre. |

A l'extrémité postérieure du rein les deux conduits principaux droit et gauche,
s'unissent et donnent un seul conduit de même structure (vessie urinaire), qui
s'ouvre au dehors.

Dans toute la région postérieure et médiane du rein (ainsi que dans la partie
antérieure) on trouve, comme nous l'avons déjà mentionné, un tissu caractéris-
tique entre les capillaires ou les plus vastes lacunes veineuses. Ce tissu, qu’on peut
nommer lymphoïde ou mieux encore pseudolymphoïde, est formé de deux sortes
de cellules : 1° cellules lymphatiques, éosinophiles, arrondies, munies d’un noyau
rond ou ovoïde placé près d’un pôle de la cellule et d’un protoplasme avec un
grand nombre de granules éosinophiles, accumulés au centre près du noyau;
2° cellules polygonales ou arrondies avec un grand noyau central et une petite
quantité de protoplasme. Les noyaux de toutes ces cellules renferment à la
périphérie la chromatine et au centre un réseau chromatique, mais en général
ils sont pauvres en chromatine.

Dans certaines cellules du second ordre on trouve deux noyaux ou un seul
extrêmement grand.

ES

Toutes ces cellules sont placées assez librement entre les vaisseaux sanguins.

Il me semble qu'ici, dans le tissu décrit, il y a comme chez le Gastrosiomus
Baïrdi des cellules qu'on pourrait prendre pour des érythroblastes, mais pas si
distinctement développées que dans le rein du Gastrostomus.

Les deux sortes de cellules décrites plus haut sont représentées sur la fig. 24,
PE 4,

Dans la région la plus antérieure du rein nous trouvons le même tissu pseudo-
lymphoïde, mais ici les capillaires et les canalicules rénaux ont un diamètre
beaucoup plus grand que dans la région médiane et postérieure et forment plusieurs
anses. Les conduits principaux manquent ici, mais il y a deux canalicules primaires
dont chacun se divise ordinairement en deux canalicules secondaires formant aussi
beaucoup d’anses. |

Les canalicules secondaires finissent par des capsules de Bowman qui
enveloppent les capillaires des gigantesques corpuscules (glomérules) de Malpighi
au nombre de 3-4 dans chaque rein. |

Les canalicules primaires sont formés d’une couche d'épithélium cylindrique
avec une bordure et une brosse basse. Les noyaux ronds se trouvent au centre.

Les canalicules secondaires sont formés par une couche d'épithélium plus
haut avec des noyaux ovoïdes et des cils en brosse beaucoup plus hauts que dans
les canalicules primaires, ce que nous voyons sur les fig. 20 et 2r, PL. r1.

Je ne peux pas dire avec certitude si le protoplasme montre ici la même
structure (rangs granuleux), que chez l’Argyropelecus; en tous cas, s’il en est
ainsi, cette structure n'est pas aussi distinctement exprimée que chez ce dernier
poisson.

Les glomérules de Malpighi au nombre de 3-4 dans la région antérieure de
chaque rein sont ici vraiment énormes en comparaison avec ces glomérules chez
l’'Argyropelecus.

Ces énormes glomérules ont ici 240 x en diamètre, tandis que les glomérules
de Malpighi chez l’Argyropelecus hemigymnus ont seulement 70 w.

Dans le cas où il y a 3 glomérules, ils sont tous libres ; s’il y en a 4, deux
d'entre eux sont unis de manière à former un septum commun, en avant et en
arrière duquel se trouvent les glomérules.

Les grands glomérules diffèrent de ceux-ci chez l’Argyropelecus en ce qu'ils
sont très abondamment lobés. Là où pénètrent les vaisseaux afférents et efférents,
on voit un tronc riche en tissu conjonctif fibrillaire et sur celui-ci, latéralement,
des branches ou lobes en forme de guirlandes (fig. 14, PI. n), composés de
nombreux capillaires et enveloppés d’épithélium de la paroi interne de la capsule
de Bowman. Les grands noyaux arrondis avec une petite quantité de protoplasme
de cet épithélium sont visibles sur les coupes, autour des parois endothéliales
des capillaires. |

Çà et là, en général en nombre très petit, on voit entre les capillaires des

éléments du tissu conjonctif fibrillaire, La fig. 16, PI. n, représente une petite partie
d'un grand glomérule. On voit ici les capillaires avec leurs noyaux endothéliaux,
les grands noyaux arrondis d’épithélium de la capsule de Bowman et les noyaux
entre les capillaires appartenant au tissu conjonctif.

Ici les glomérules sont si grands qu’on peut les comparer aux « glomus »
énormes de l’embryon ou de certaines formes de téléostéens adultes avec un
« rein céphalique » persistant (Kopfniere). Mais tandis qu'il y en a une paire
dans le « rein céphalique » de Fierasfer, Atherina, Mugil et Zoarces (d'après
Emery, 1880, 1881) ou comme dans le « rein céphalique » du Zepadogasier
(d’après Guitel, 1906), il y en a ici 3 ou 4 paires, ce qui ne permet pas de les
homologuer avec les grands glomérules du rein céphalique proprement dit, qui
persiste chez les poissons adultes dans les cas mentionnés plus haut.

IV. Les reins du Gonostoma bathyphilum (Vaxll.)

Les reins du Gonostoma bathyphilum sont formés de trois parties, très
distinctement délimitées l’une de l’autre, car les parties antérieure et postérieure
sont bien développées et renferment des canalicules rénaux secondaires et des
glomérules de Malpighi, tandis que la partie médiane est très faiblement développée
et ne contient ni canalicules ni glomérules.

La partie médiane est paire, les parties antérieure et postérieure sont impaires
en apparence, mais en réalité elles se composent de deux moïitiés symétriques, droite
et gauche. Cette structure paire, moins marquée dans la partie postérieure, est
très distincte dans la partie antérieure ; celle-ci est la plus longue, la postérieure
est la plus courte et quadrangulaire.

Nous voyons ces parties, coupées transversalement, sur les fig. 4 et 5, PL. nr.

Je ne donne pas une description détaillée de la structure histologique,
parce que mon matériel des viscères du Gonosioma fut conservé exclusivement
dans l'alcool.

Dans la partie antérieure on voit un grand sillon ventral, où se trouve la
grande veine (cardinale). Près de la surface ventrale, à droite et à gauche, courent
deux conduits rénaux principaux, où s'ouvrent, dans des intervalles métamé-
riques, les canalicules rénaux primaires. Chacun de ces derniers se divise dicho-
tomiquement en deux canalicules secondaires aboutissant, je pense, aux glomérules
de Malpighi, qui sont ici au nombre de 8, quelquefois de 7 paires, placées
alternativement en deux rangées, une ventrale et une dorsale. Entre les canalicules
primaires et secondaires, qui donnent beaucoup d’anses, on voit plusieurs
capillaires et lacunes veineuses, entourés d’un tissu pseudolymphoïde formé d’une
seule sorte de cellules arrondies avec un protoplasme hyalin et pâle, un noyau
situé au centre ou plus souvent excentrique. Il n’y a pas dans ce tissu de cellules
éosinophiles granuleuses, Ces dernières, généralement en petit nombre, se trouvent

+ à

Re

seulement dans la partie la plus ventrale du corps rénal, autour des vaisseaux
sanguins, qu'elles enveloppent, comme nous le voyons sur la fig. 6, PI. mr.

Dans chaque partie médiane du rein on trouve seulement un conduit rénal
principal et une petite quantité de tissu pseudolymphoïde (fig. 5, PI. m1). Dans sa
partie postérieure on voit deux conduits rénaux principaux, 4 paires, à ce qu'il me
semble, de glomérules de Malpighi, placés alternativement en deux rangs : un
latéro-ventral et un médio-ventral. Les glomérules du premier rang se trouvent en
dehors du tissu pseudolymphoïde du rein, dans le tissu conjonctif fibrillaire, qu'il
entoure (fig. 4, PI. nr).

= Il me semble que dans chaque conduit rénal principal s'ouvrent (dans la partie
postérieure du rein) deux canalicules primaires, dont chacun se divise dichotomi-
quement en deux canalicules secondaires, qui aboutissent aux glomérules de
Malpighi.

A la face dorsale convexe de cette partie postérieure du rein se trouvent deux
corps blanchâtres, très lâchement unis, à l’aide de tissu conjonctif fibrillaire, avec
le corps rénal même et visibles à l'œil nu.

Les coupes montrent que chacun de ces deux corps est formé d’une paroi
épithéliale extrêmement mince, qui donne un ou deux plis profonds vers l’intérieur
du corps et renferme plusieurs rangs de cellules assez grandes, cubiques, avec
un protoplasme granuleux et un petit noyau. Entre les rangs des cellules
épithéliales il y a beaucoup de capillaires sanguins.

Après avoir comparé ces formations avec l'image du rein chez l'Argyro-
pelecus (fig. 11, PI. …), je suis sûr que nous avons ici à faire avec les produits de
glomérules de Malpighi réduits, peut-être de deux glomérules unis ensemble dans
chacune de ces formations.

En arrière de la partie postérieure du rein les deux conduits rénaux prin-
cipaux s'ouvrent dans une vessie urinaire cylindrique, assez longue, aux minces
parois.

V. Les reins du Gonostoma grande {Günther)

Chez cette espèce, dont un exemplaire bien conservé dans le liquide de
Bouin était à ma disposition, les reins présentent presque les mêmes relations
macroscopiques que chez l'espèce précédente, avec quelques différences que
voici :

La région rénale antérieure, plus épaisse, formée de deux moitiés droite et
gauche, délimitées l’une de l’autre par un sillon ventral, est plus courte que
chez G. bathyphilum. La région moyenne, très mince, forme deux moitiés bien
unies ensemble (chez G. bathyphilum elles sont bien séparées). La région pos-
térieure a aussi un aspect impair, mais est formée de deux moitiés (droite et gauche)
complètement unies; seul un large sillon ventral montre la limite entre elles.

Cette région rénale est quadrangulaire, aplatie dorso-ventralement, comme chez
G. bathyphilum ; dans sa partie postérieure commence la vessie urinaire, plus courte
que chez G. bathyphilum.

Les deux conduits principaux sont placés dans la région antérieure des reins
latéro-ventralement, dans la région moyenne ventralement, latéro-ventralement
dans la postérieure, où ils s'ouvrent dans la vessie urinaire. |

Dans toute la longueur des reins s'ouvrent dans les conduits principaux les
canalicules primaires, qui forment les anses et se divisent dichotomiquement en
deux canalicules secondaires, aussi avec anses. Je ne peux pas dire si les cana-
licules secondaires se divisent à leur tour, mais il semble qu'ils aboutissent aux
glomérules de Malpighi, dont la position et le nombre sont les suivants : dans la
région rénale antérieure on voit deux grandes formations latéro-ventrales
antérieures et deux postérieures, qui très probablement représentent les glomérules
de Malpighi réduits. Plus bas je décrirai la structure histologique de ces formations.

Dans la région moyenne des reins on trouve trois paires de glomérules de
Malpighi normalement développés. Dans leur région postérieure 1l y a une paire
de formations cellulaires très grandes, placées dorsalement, qui représentent sans
doute les glomérules de Malpighi réduits et trois paires de glomérules normalement
développés.

Ainsi le nombre de glomérules de Malpighi chez Gonosioma grande est un
peu moindre que chez G. bathyphilum, mais en général il existe sans doute des
différences individuelles dans le nombre des glomérules chez divers exemplaires,
ce que je ne pouvais pas constater d'une manière sûre n'ayant à ma disposition
qu'un exemplaire unique.

Les relations anatomiques des canalicules rénaux primaires et secondaires,
ainsi que la structure histologique de leurs parois chez G. grande ne présentent
rien d’extraordinaire. Il est digne de remarque que dans la région moyenne des
reins les canalicules primaires et secondaires avec leurs anses se trouvent
principalement dans la partie centrale directement autour du grand vaisseau
central. |

Le tissu pseudolymphoïde accumulé partout en grande quantité entre les
canalicules rénaux, les troncs sanguins et les capillaires, diffère. de ce tissu chez
G. bathyphilum en ce qu'il renferme un nombre très grand de cellules éosinophiles,
qui forment ici de grands îlots visibles même sous un faible grossissement (îlots
rouges, sur fond violet dans les préparations colorées par l'hématoxyline avec
l’éosine).

Ces cellules éosinophiles sont relativement assez grandes, elles renferment
un noyau ovoïde près du pôle et une grande quantité de granules éosinophiles
assez volumineux, comme nous le voyons sur la fig. 26, PI. 1.

Dans le tissu pseudolymphoïde, entre les îlots de cellules éosinophiles il y
a encore d’autres cellules, notamment : 1° de grandes cellules ovoïdes avec un

noyau arrondi, parfois avec deux noyaux et un protoplasme homogène, vacuolisé
çà et là; 2° de petits lymphocytes avec un noyau rond au centre; 3° des lympho-
cytes très petits, dont le noyau se colore d’une manière très intense par l’hémato-
xyline, et est entouré par une mincé couche de protoplasme. Entre les cellules
nommées on voit aussi des accumulations granuleusés pigmentairés jaunâtres
et brunûtres.

Dans les vaisseaux sanguins j'ai trouvé des érythrocytes, des leutocytes
assez nombreux et des cellules de passage entre les érythroblastes et les érythrocytes.
On peut donc admettre qu'ici, comme par exemple chez lé Gastrostomus, des
érythrocytes se forment dans le tissu rénal.

Chez Gonostoma grande on trouve d'énormes glomérules de Malpighi réduits :
deux paires latéralement dans la région antérieure des reins ét üné paire dôrsa-
lement dans leur région postérieure, où ils forment deux corpuscules ovoïdes
lâchemeñt réunis avec le rein. Le diamètre long de ces corpusculés allongés et
un peu aplatis a environ 0.4" à 0.5", le diamètre court a 6.2 à 0.3",

Les coupes montrent (fig. 25, PI. ”n) que le corpuscule renferme des capillaires
sanguins avec des érythrocytes normaux et des leucocytes et qué l’endothélium
de ces capillaires est couvert paf deux couches dé hautes cellules d’un caractère
épithélial, avec des noyaux ovoïdes au centre. Ces couches épithéliales se présentent
sur les coupes comme des cordons cellulaires solides entre les capillaires, cordons
un peu aplatis. Le protoplasme de ces cellules renferme dés granulations éosino-
philes extrêmement fines.

En se basant sur les faits cités on peut admettre qué très probablement ces
glomérules de Malpighi réduits ne sont pas des organes réduits physiologiquement,
mais présentent des formations aux fonctions modifiées. La présence d’un tissu
épithélial de nature glandulaire (protoplasme granuleux) ét de capillaires sanguins
entourés directement par ce tissu, l'absence dé conduits glandulaires, tous ces
faits permettent de juger que ces Corpuscules représentent des organes à sécrétion
interne, dont le rôle physiologique èst inconnu.

Quant à la morphologie de ces corpuscules réduits on peut admettre avec
un haut degré de probabilité que le tissu épithélial entourant les cäpillaires est
ün produit de la paroi épithéliale interne de la capsule de Bowman, qui entourait
le jeune glomérulé de Malpighi. Il est peut-être le produit des deux parois, interné
et externe, de la capsule de Bowman, car la touche épithéliale qui enveloppe
l’'endothélium des capillaires sanguins est double (deux couches d’épithélium haut),

Extérieurement le corpuscule est entouré par une couche de cellules très
aplaties ; si cette couche représente aussi un produit d’une couche externe de la
capsule de Bowman ou si elle est un produit du tissu conjonctif, je ne peux le
dire. La première opinion me semble être plus probable.

VI. Quelques remarques générales.

Nos recherches montrent que chez les quatre espèces de poissons de grande
profondeur : Gastrostomus Baïirdi, Arsyropelecus hemigymnus, Chauliodus Sloanei
et Gonositoma bathyphilum les reins ont une structure tout à fait différente.

Chez Gastrosiomus lé rein est impair et on ne peut pas distinguer ici dés
parties bien séparées, car la structure dans touté sa longueur est la même. Il
contient un tissu pseudolymphoïde et des grandes lacunes veineuses, mais point
de glomérules de Malpighi, ce qui est très intéressant et exceptionnel.

Chez l’Argyropelecus on distingue trois parties : antérieure, médiane ét
postérieure, dont la première et la seconde ont une structure semblable. Elles
contiennent dans leurs régions internes (proximales) un tissu épithélial très
caractéristique avec un fin réseau de capillaires sanguins entre ses cellules et
dans leurs régions externes (distales) un tissu pseudolymphoïde et des canalicules
rénaux ramifiés. Dans la partie médiane du rein il y a des glomérulés de Malpighi.
La partie postérieure contient un tissu pseudolymphoïde, des canalicules rénaux
ramifiés et des glomérules de Malpighi.

Chez Chauliodus on distingue bién trois parties rénales : une antérieure,
paire, contenant les canalicules rénaux ramifiés et 3 où 4 gigantesques glomérules
de Malpighi (3-4 paires); une médiane paire et uñe postérieure impaire. Ces
deux dernières parties sont dépourvues de canaliculés rénaux propremént dits ;
elles contiennent seulement les conduits principaux avec de petits canalicules
périphériques extrêmement courts ; les glomérules de Malpighi manquent ici.
Partout on trouve dans le rein un tissu pseudolymphoïde.

+ Chez Gonostoma les trois parties rénales sont bien délimitées l’une dé l’autre;
la moyenne est fortement réduite. Cette dernière est paire, tandis que dans
les parties antérieure et postérieure les deux moitiés (droite et gauche) sont réunies
ensemble. Les glomérules de Malpighi et les canalicules rénaux se trouvent
seulèment dans les parties antérieure et postérieure. On voit partout dans le rein
uñ tissu pseudolymphoïde.

J'ai déjà dit plus haut que les petits canalicules courts et ramifiés qu’on
voit sur toute la longueur du conduit principal chez Chauliodus ne répondent
pas aux Canalicules rénaux proprement dits. Je pense qu'ils correspondent aux
convexités ramifiées du conduit rénal principal chez ZLepadogaster (d'après
Guitel). |

Quant à ces convexités B. Hallér dit avec raison : « Es bésitit (bei Leépadogaster)
der grosse Nierengang bis zur Einmündung baumfôrmig verzweigte Ausbuchtungen,
die, wie ich hinzufügen môchte, bei der grossen Tätigkeit des Ganges anderer
Knochenfische aus dem Princip der Flächenvergrôsserung sich erklären lassen.
Diese Ausbuchtüungen sind mit dén Nierenkanälchen nicht zu verwechseln ».

Chez Chauliodus ces étroites convexités ont la forme de canalicules, mais
leur structure et leurs relations topographiques montrent qu'ici aussi elles ne
correspondent pas morphologiquement et physiologiquement aux canalicules
proprement dits.

Des quatre formes d'organes rénaux décrites par moi, celle d'Argyropelecus
correspond le plus au type très répandu chez les téléostéens, chez lesquels
Hyrtl (1851) et après B. Haller (1908) distinguent le plus souvent trois parties :
céphalique, ventrale et caudale (Hyrtl) ou : première, seconde et troisième
(Haller). |

Mais la structure histologique, tellement caractéristique et originale (spé-
cialement chez Argyropelecus, Gastrosiomus et Chauliodus) chez chacune des
formes décrites par moi, est, sous plusieurs rapports, très différente de la
structure décrite par les autres auteurs (spécialement par Haller) chez les
téléostéens.

En examinant la littérature sur l'histologie des reins chez les poissons
téléostéens, on trouve que les plus importants sont les travaux de Felix (1897)
et de Haller (1908).

Felix dit sur le tissu « pseudolymphoïde » du rein chez Salmo (p. 443) :
« Das ganze Exkretionsystem der Salmoniden liegt in einem eigenthümlichen
Gewebe eingebettet, das in der Litteratur als lymphoides Gewebe bezeichnet
wird... ; die ganze Niere sammt dem lymphoiden Gewebe wird von einer
Kapsel eingeschlossen, durch welche erstere allseits scharf umgrenzt wird.
Von dem Raum welchen die Kapsel umschliesst, wird nur der allergeringste
Teil von dem eigentlichen Drüsengewebe eingenommen ; der Lôwentheil fällt
auf die Kardinalvenen mit ihren Adnexen und das sogenannte Ilymphoide
Gewebe ».

« Ich môchte zunächst betonen, dass der Name « lymphoides Gewebe » ein
vollkommen unpassender Name ist. Wir gebrauchen den Terminus « lymphoides
Gewebe » gleichbedeutend mit adenoidem Gewebe und verstehen darunter ein
Gewebe, das sich aus zwei Bestandteilen zusammensetzt, aus einem Reticulum
von feinen Fäden... in dessen Maschen kleine Rundzellen mit rundem Kern und
wenig Protoplasma eingelagert sind. In dem sogenannten lymphoiden Gewebe
der Salmonidenniere fehlt zunächst das Reticulum. Weder auf feinen Schnitten
noch auf ausgepinselten Präparaten war eine Spur eines solchen Netzwerkes
zu sehen ». |

Ainsi nous voyons que Felix n’a trouvé dans le tissu pseudolymphoïde aucune
trace de cellules appartenant au « reticulum ». Tandis que j'ai trouvé, par exemple
chez Gastrostomus, entre les cellules « lymphoïdes » des cellules très allongées,
munies de fibres longues et fines, qui doivent être considérées comme appartenant
au « reticulum », quoiqu'il ne soit pas ici développé d’une manière aussi typique
que dans le vrai tissu lymphoïde. Mais les cellules « lymphoïdes » mêmes, si riches

EE

en granules éosinophiles (chez Gastrostomus, mais pas chez Gonostoma), munies
de petits noyaux et riches en protoplasme diffèrent beaucoup des cellules « lym-
phoïdes » typiques, munies partout de grands noyaux et pauvres en protoplasme.
Seules les cellules désignées par b dans la fig. 12, PI. 1 chez Gastrostomus
ressemblent plus aux cellules lymphoïdes typiques. En se basant sur ces faits, je
pense donc qu'il est plus raisonnable d'appeler le tissu décrit « pseudolymphoïde »,
d'accord avec W. Felix.

Quant à l’origine du tissu pseudolymphoïde je ne peux rien dire, parce que je
n'avais pas des matériaux embryogéniques.

Felix a étudié l’origine de ce tissu chez les Salmonides et il affirme qu'il est un
produit des parois veineuses chez l'embryon. Il a vu sur ces parois des épais-
sissements qu'il nomme « Wucherungen der Venenwand ».

Il dit : « Diese Wucherungen beweisen auf das deutlichste die Zugehôrigkeit
der Zellen zur Venenwand, denn an derselben beteiligen sich in gleicher Weise
angelagerte Zellen, wie Endothelzellen ; die gewucherten Endothelzellen sind
durch nichts von den angelagerten Zellen zu unterscheiden ».

D'après Felix ces cellules forment « ein Balkenwerk » au caractère « épithé-
lioïde » et se transforment ensuite en tissu pseudolymphoïde.

Très intéressante est l'observation de Felix, selon laquelle ces cellules
« épithélioïdes » de l'embryon, qui chez le poisson adulte forment le tissu pseudo-
lymphoïde du rein, montrent chez les embryons et les jeunes poissons (par
exemple chez un Salmo 468 jours après la fécondation, c’est-à-dire un an
après l’éclosion) divers passages entre les cellules typiques et les corpuscules
rouges du sang. | |

Ainsi nous voyons que d’après cet auteur le tissu pseudolymphoïde joue un
rôle dans la formation des érythrocytes.

L'idée que le tissu pseudolymphoïde du rein des poissons adultes constitue
«eine Bildungstätte » pour les corpuscules rouges et blancs du sang a été déjà
prononcée par Ziegler (1887), comme une hypothèse. Nous voyons que cette
hypothèse de Ziegler s'accorde complètement avec les faits observés par moi chez
le Gastrostomus adulte.

Quant au travail de Haller, il est intéressant de voir que cet auteur décrit
chez plusieurs poissons téléostéens, par exemple chez Salmo, Gasterosteus, Gobio,
Leuciscus, Esox « un tissu pseudolymphoïde » (pseudolymphatisches Gewebe)
« dass sich in Stränge formt, welche untereinander durch andere Querstränge
zu einem netzfürmigen Balkenwerk verbunden werden. Zwischen diesen Strängen
liegt ein sehr reiches weitkalibriges Venennetz und die Windungen der Nieren-
kanälchen ».

Les différences de structure trouvées par cet auteur dans les trois parties
rénales des téléostéens ne répondent pas aux différences décrites par moi chez
diverses formes.

D'après Haller, dans la plus grande partie du rein, chez Gasterosteus, Gobio
et plusieurs autres poissons, s'ouvrent dans le conduit rénal principal (Nieren-
gang), métamériquement, les canalicules qu’il nomme, comme moi, canalicules
rénaux primaires (primäre Harncanälchen) ou « Sammelcanälchen », dont chacun
se divise dichotomiquement en deux canalicules « secondaires » et puis en
deux canalicules « tertiaires », qui sont les plus étroits et aboutissent au
glomérule de Malpighi — relations qui répondent à celles que j'ai observées chez
plusieurs formes.

En

CHAPITRE DEUXIÈME

Canal digestif de Gastrostomus Bairdi (Gill et Ryder),
Melamphaes mizolepis(Günther), Stomias boa(Risso), Cyema atrum(Günther),
Gonostoma bathyphilum (Vaillant), Gonostoma elongatum (Günther)
et Gonostoma grande (Collett).

I. Canal digestif de Gastrostomus Bairdi {Gill et Ryder).

Le canal digestif de Gastrostomus Baïirdi se compose des parties suivantes
(fig. 15-18, PI. nn) : 1° la cavité buccale ; 2° l’œsophage ; 3° l'estomac ; 4° l'intestin
pylorique ou duodénal ; 5° l'intestin moyen ; 6° l'intestin postérieur ou rectum.

En connexion physiologique ou seulement topographique avec le canal digestif
se trouvent : 1° le pancréas; 2° le foie ; 3° la rate; 4° un organe que j'appelle
rate accessoire ou « paralien ».

La cayité buccale. — Au point de vue anatomique et physiologique le nom
de notre poisson Gasirostomus (gaster-stoma) est complètement faux, parce que
sa gigantesque cavité buccale n'a rien à faire avec l'estomac et est tapissée par
un épithélium ayant les caractères de celui de la peau.

La cavité buccale est limitée latéralement et ventralement par une grande
membrane, qui s'étend entre les os maxillaire, hyomandibulaire, quadratum
et mandibulaire de chaque côté et entre les branches mandibulaires droite et
gauche, en formant un vaste sac qui sert de réservoir pour les détritus, nourriture
principale du Gastrostomus. |

Extérieurement, cette membrane est formée par la peau; à l’intérieur elle
est, comme je l'ai déjà dit, tapissée par un épithélium ayant le caractère d’un
épithélium de la peau.

Entre les deux couches épithéliales, externe et interne, se trouve une couche :
de tissu conjonctif fibrillaire avec de nombreuses et courtes fibres musculaires,
qui courent dans diverses directions et causent la grande contractilité de la
membrane buccale. En se servant de la méthode de Weiïgert (résorcine-fuchsine)
j'ai aussi trouvé un grand nombre de fibrilles élastiques très fines, qui courent
dans diverses directions entre les fibres musculaires. Grâce à cette structure

4 N.

= 9,60 =

la membrane buccale est contractile, élastique, ce qui est très important pour
son rôle physiologique.

Je dois encore ajouter que dans le tissu conjonctif on distingue trois couches :
une externe et une interne plus compactes, renfermant beaucoup de cellules
pigmentaires noires, peu de fibres musculaires et une couche moyenne très
lâche, munie d’un grand nombre de fibres musculaires et de capillaires.

L'épithélium interne, comme celui de la peau, se compose de plusieurs
couches de cellules et est extrêmement riche en glandes unicellulaires, dont il y
a deux sortes : 1° les cellules mucinogènes, ovoïdes, sacculiformes, avec un
protoplasme alvéolaire et un noyau aplati situé latéralement ou à la base et 2° Les
cellules séreuses, qui ont une structure décrite par moi et mon élève W. Kulezycki
dans les cellules séreuses de la peau chez Tinca.

La cellule (glande) séreuse, ovoïde, allongée, renferme un protoplasme homo-
gène réfringent, (fig. 19, PL. m), se colorant en rouge par l’éosine et en noir
par l'hématoxyline ferrique de Heidenhain. Le noyau se trouve au centre,
entouré par une substance centrale finement granuleuse, qui se prolonge sous
forme de pseudopodes vers le protoplasme périphérique. Le plus souvent le noyau
est situé au pôle de cette accumulation granuleuse.

En se basant sur mes observations chez Tinca, je pense que cette substance
granuleuse centrale est une sécrétion séreuse qui, à mesure que la fonction
sécrétoire augmente, coule en dehors à travers le protoplasme périphérique.
Dans les cellules où la quantité de la substance centrale (sécrétoire) est plus
grande, le noyau s’aplatit (fig. 19, PI. im).

En arrière, la cavité buccale se rétrécit fortement et passe à l’æsophage
très court, avec une muqueuse formant beaucoup de plis longitudinaux.

L'épithélium de l'œsophage est, comme dans la cavité buccale, formé par
plusieurs couches de cellules, dont la plus basale est la plus haute, presque
cylindrique. Il n'y a point de glandes unicellulaires séreuses, mais au contraire
il y a beaucoup de glandes unicellulaires mucinogènes, sacculiformes et ovoïdes
(fig. 20, PI. im).

Le tissu conjonctif sous-épithélial est compact. Les fibres musculaires striées
forment principalement une épaisse couche circulaire, mais il y a aussi des fibres
isolées dans d’autres directions, qui ne forment pas une couche bien délimitée.

L'estomac est très vaste, sacciforme. On distingue ici une partie antérieure
plus large, où les plis de la muqueuse sont très bas et presque invisibles à l'œil
nu et une partie postérieure plus étroite avec des plis longitudinaux très hauts
et ramifiés, bien visibles (fig. 18, PL. im).

Les parois stomacales sont épaisses et ont presque partout la même structure
histologique.

Sur toute la surface interne de l'estomac se trouvent les glandes stomacales.

L'épithélium stomacal, comme chez tous les poissons, se compose d’une

couche de cellules hautes, cylindriques, munies sur leur face libre d’un tampon
caractéristique (Pfropf). Mais ici, chez Gastrostomus, j'ai observé un fait que
je n'avais pas rencontré chez d'autres poissons, notamment ce tampon n'est pas
homogène,mais montre des striations,ce qui ne me semble pas être un « artefactum »
(les préparations étaient fixées dans le liquide de Bouin).

Les glandes stomacales sont partout développées uniformément en une
couche continue et ne forment pas de groupes isolés, comme par exemple chez
Chauliodus (voir le Fascicule Lvin) où chez Melamphaes, ce que nous verrons
plus loin.

On voit de courts conduits glandulaires, tapissés par un épithélium cylindrique
ou cubique avec une bordure plasmatique striée. Le court conduit se continue
en une partie sécrétoire de la glande, tubuleuse, unique ou ce qui est plus fréquent
divisée dichotomiquement en deux ou trois tubes. Les cellules sécrétoires sont
cubiques ou un peu aplaties, avec un protoplasme granuleux, une bordure
homogène sur la face libre et un noyau ovoïde près de la base. Les granulations
sont accumulées principalement dans la partie basale de la cellule ; dans la partie
apicale le protoplasme montre des striations très fines (fig. 14, PL. rv).

Entre les tubes glandulaires pénètre en abondance le tissu conjonctif fibrillaire,
bien visible sur les préparations colorées par l’hématoxyline et le liquide de
Van Gieson (fig. 6 et 7, PI. rv). |

En dehors de la couche glandulaire se trouve une épaisse couche de tissu
conjonctif fibrillaire lâche, riche en cellules, fibrilles, capillaires et cellules
pigmentaires noires, qu'on voit aussi en dehors de la couche musculaire et qui
causent une forte coloration noire de la paroi entière (fig. 7, PI. 1v).

La musculature stomacale est développée très fortement. Dans la muqueuse
même, juste au-dessous de la couche glandulaire, se trouve une couche musculaire
qu'on peut nommer muscularis mucosæ, formée principalement par des fibres
longitudinales isolées et lisses. Ici seulement une très petite quantité de fibres
courent dans d’autres directions, par exemple circulairement ou radialement
fier BEni

La couche musculaire proprement dite /muscularis) se compose ordinairement
d’une couche interne plus épaisse de fibres circulaires et d’une couche externe
plus mince de fibres longitudinales ; les unes et les autres sont lisses (fig. 6, PL. rv).
Les fibrilles du tissu conjonctif qui sépare les fibres musculaires l’une de l'autre,
forment des enveloppes très délicates autour de ces dernières ; se fixant en partie
à celles-ci elles donnent des images imitant très souvent une striation transversale
des fibres musculaires. Il faut encore ajouter que dans les fibres musculaires on
voit bien des fibrilles isolées dans le sarcoplasme périphérique.

Cette disposition typique des couches musculaires se trouve dans toute
la partie postérieure de l'estomac, où la muqueuse forme de hauts plis longi-
tudinaux et en partie ramifiés. Dans la partie antérieure et principalement là où

—— 98

commence l'intestin pylorique (duodénum), ces relations changent quelquefois.
Par exemple la couche externe de fibres musculaires longitudinales est inter-
rompue, formée de faisceaux de fibres longitudinales complètement isolées l’une
de l’autre et faiblement développées, comme nous le voyons sur la fig. 7, PL. 1v.
En d’autres points on voit une inversion des couches musculaires : la couche de
faisceaux de fibres longitudinales est interne et la couche de fibres musculaires
circulaires est externe (fig. 11, Pl. iv). La même inversion dans la disposition des
deux couches est aussi visible sur la fig. 10, Pl. rv, où la couche musculaire (#”)
stomacale entoure aussi la partie initiale de l'intestin pylorique qui se trouve
dans la paroi de l’estomac même.

En dehors de la couche musculaire on voit encore une couche externe de tissu
conjonctif fibrillaire (serosa), très riche en grands troncs artériels de vaisseaux
sanguins. Le grand tronc artériel (arteria gastrica), divisé en 3-4 branches, est
visible sur les fig. 15 et 17, Pl. m; l’une de ces branches coupée transversalement
est visible sur la fig. 6, PI. 1v.

On doit encore ajouter que çà et là dans la partie la plus périphérique de la
couche de tissu conjonctif fibrillaire en dehors de la muscularis se trouvent de
grosses fibres musculaires striées, longitudinales et obliques, probablement d’origine
œsophagienne, comme nous le voyons sur la fig. 1, PI. v.

L'intestin. — La partie initiale de l’intestin ou l'intestin pylorique (duodénum)
naît de l'estomac du côté droit, au point où la grande artère gastrique pénètre
dans la paroi stomacale. Il s'étend en avant, forme un arc, au milieu duquel
se trouve un rétrécissement (sphincter), puis se dirige en arrière où il passe
en une partie plus large d’intestin placée parallèlement au long axe stomacal.
Cette partie la plus large se rétrécit un peu en arrière, forme ici deux ou trois
courtes anses et passe à la partie plus postérieure, l'intestin rectal.

I est très intéressant de voir que la partie initiale de l'intestin pylorique
sétend dans la paroi stomacale même, entourée par une couche musculaire
commune pour la cavité stomacale et la cavité de l'intestin pylorique.

Sur les coupes transversales par l'estomac, dans la région où se trouve cette
partie initiale du duodénum, on voit la grande cavité stomacale tapissée par une
couche épithéliale (glandulaire)et entourée par une épaisse couche de tissu conjonctif
avec la muscularis mucosæ et par les couches musculaires ; dans le tissu conjonctif
du côté droit nous voyons ici la cavité du duodénum (intestin pylorique) tapissée
par un épithélium, munie d'une muscularis mucosæ propre, tandis que le tissu
conjonctif de la muqueuse passe directement dans celle de l’estomac et la
muscularis est commune pour ce dernier et pour cette partie du duodénum,
c'est ce qu'on voit sur la fig. 10, PI. 1v, qui représente une partie de cette muscularis
commune (7. e, m. it).

Le fait que la musculature circulaire est commune pour l'estomac et la partie
initiale du duodénum est d’une grande importance physiologique, parce que
la contraction de ces deux organes doit être simultanée.

Dans la première partie de mon travail j'ai dit, sous forme d’une hypothèse, que
chez beaucoup de poissons de grande profondeur les parties dures et indigestes des
aliments sont très probablement rejetées au dehors par s bouche, sous l'influence
d'une forte contraction des parois stomacales.

Or le fait mentionné ci-dessus parle à un haut se pour cette opinion,
parce qu'ici la forte contraction des muscles circulaires de l'estomac ferme en
même temps la partie initiale du duodénum.

Je pense que les contractions de la muscularis mucosæ et les faibles contractions
des fibres circulaires de la muscularis suffisent pour conduire les parties alimen-
taires fluides et assez molles de l'estomac à l'intestin, tandis que les contractions
très fortes de ces fibres, en rétrécissant en même temps la partie initiale de l'intestin
pylorique, agissent comme sphincter et, ne permettant pas aux parties trop dures
de pénétrer dans l'intestin, les rejettent en dehors.

Dans la partie du duodénum située dans la paroi stomacale on distingue sur les
coupes transversales deux moitiés : gauche et droite, limitées l’une de l'autre
par un petit rétrécissement de la cavité intestinale (fig. 10, PI. rv). La moitié
gauche est tapissée par un épithélium stomacal typique et contient les glandes
stomacales, comme dans l'estomac même, c’est pourquoi cette moitié doit être
considérée au point de vue histologique comme stomacale, tandis que la moitié
droite est tapissée par un épithélium intestinal et ne contient point de glandes
stomacales.

Dans la partie du duodénum plus postérieure, formant l'arc, l’épithélium
a déjà le caractère exclusivement intestinal et les glandes stomacales manquent
ici complètement, tandis qu’au commencement de l'intestin duodénal, dans le
voisinage direct de l’orifice pylorique (gastro-duodénal) la cavité est tapissée exclu-
sivement par l’épithélium stomacal avec glandes, comme nous le voyons sur la
fig. 1, Pl. 1v (coupe transversale). Sur la même coupe on voit aussi que la cavité
duodénale est ici divisée en trois parties par deux cloisons de tissu conjonctif
tapissées d’épithélium glandulaire, ce qui sert bien à la fermeture hermétique
de la cavité pylorique pendant la contraction des muscles circulaires.

Ainsi on distingue dans le duodénum trois régions : 1° une antérieure, tapissée
exclusivement par un épithélium stomacal ; 2° une centrale, tapissée dans la
moitié gauche par un épithélium stomacal et dans la moitié droite par un épi-
thélium intestinal et 3° une postérieure, tapissée exclusivement par un épithélium
intestinal.

Les muscles propres du duodénum, qui correspondent à la muscularis
mucosæ de l'estomac sont formés de fibres circulaires internes et de fibres longi-
tudinales externes, d’un certain nombre de fibres radiales et de fibres croisées dans
diverses directions. La musculature est lisse. Les fibres croisées se trouvent prin-
cipalement du côté gauche, où cette musculature se réunit avec la muscularis
mucosæ stomacale.

ee

Au point où sur l'arc antérieur du duodénum se trouve un rétrécissement, il ÿ
a de fortes fibres circulaires formant une sorte de sphincter.

J'ai dit que toute la musculature stomacale et duodénale est lisse. Mais je dois
ajouter que le tissu conjonctif forme ici, entre les fibres musculaires isolées,
des cloisons très délicates et des fibrilles extrêmement fines, qui courent transver-
salement, se fixent aux fibres mêmes et imitent quelquefois les stries transversales.
Dans les fibres musculaires lisses de l'estomac on voit très bien les fibrilles (myo-
fibrilles) placées dans la partie périphérique de la fibre, tandis que la principale
masse de sarcoplasme avec le long noyau se trouve au centre (fig. 2, 3, 4, PI. v).

Nous savons déjà que le duodénum, où s'ouvrent les conduits hépatique
et pancréatique (dans son arc antérieur), passe directement en une partie intestinale
plus large. Les parois de la région antérieure de cette large partie sont un peu plus
épaisses que dans la région postérieure.

Dans cette région antérieure la muqueuse intestinale forme un certain nombre
de plis longitudinaux tellement hauts, qu'ils se réunissent au centre de la cavité
intestinale. Entre ces plis longitudinaux il y a aussi çà et là des plis transversaux
et c'est pourquoi la cavité intestinale n’est pas ici unique. Sur les coupes trans-
versales elle apparaît comme divisée en un certain nombre de cavités, limitées
l’une de l’autre par des cloisons radiales et en partie transversales, ce qui augmente
à un haut degré la surface interne de l'intestin. |

On voit ces relations sur la fig. 1, PL. 1v. (Sous l'action des réactifs l’épithélium
est ici séparé du tissu conjonctif de la muqueuse).

Les cloisons nommées sont formées par un tissu conjonctif fibrillaire et
tapissées par un épithélium ; les fibres musculaires n'y pénètrent pas.

Plus en arrière on voit déjà une cavité intestinale unique ; sur les coupes
transversales les plis forment un réseau de cloisons seulement dans la partie péri-
phérique de cette cavité (fig. 5, PI. 1v).

La paroi intestinale est très mince, comme chez beaucoup d’autres poissons
de grande profondeur ; d'après mes recherches la relation de l'épaisseur de l’épi-
thélium au reste de la paroi intestinale — couche de tissu conjonctif fibrillaire et
musculaire — est de 5 à 1.

La musculature intestinale est très faiblement développée. On ne trouve
pas ici de couches épaisses mais seulement des fibres musculaires isolées, plongées
dans le tissu conjonctif de la muqueuse. Parmi ces fibres on distingue les internes
circulaires et les externes longitudinales ; les unes et les autres forment des couches
très minces (fig. 13, PI. 1v). | |

Quant à l’épithélium intestinal, il ne présente rien d’extraordinaire. Les
cellules sont très hautes, cylindriques aux bases amincies, avec un protoplasme
alvéolaire (fig. 2, PI. 1v) ou très finement granuleux, avec des noyaux arrondis
où un peu ovoïdes, situés au centre et pauvres en chromatine. Au-dessus du noyau
le protoplasme est pâle, avec alvéoles plus développés, qui répondent très

=

probablement aux négatifs de « l’apparato reticolare » de Golgi-Kopsch, généra-
lement développé (d'après les recherches de mes élèves Weigl et Poluszynski)
dans tous les épithéliums cylindriques au-dessus des noyaux.

Les cellules épithéliales sont munies d’une bordure en brosse très bien
développée. Sur les préparations colorées par l’hématoxyline ferrique de Heidenhain
j'ai observé qu'à la base de chaque élément de la brosse se trouve un corpuscule
bacilliforme se colorant intensivement en noir (comme les corpuscules basaux
des cils). J'ai aussi vu les éléments d’un réseau apical intercellulaire (Schlussleis-
tennetz) bien développés (fig. 13, PI. 1v).

Les cellules mucinogènes, dont le nombre est assez grand, sont hautes, avec
un noyau situé partout à la base (fig. 2 et 13, PI. rv).

Assez souvent on trouve aussi des petits leucocytes dans ou sous l’épithélium
intestinal, et entre les cellules épithéliales des petits noyaux allongés, qui se
colorent intensivement en noir par l’hématoxyline ferrique et qui appartiennent
très probablement aux cellules épithéliales réduites.

Dans l'intestin rectal la couche de tissu conjonctif est beaucoup plus épaisse
que dans l'intestin moyen (voir la fig. 12, PI. 1v); les noyaux de l’épithélium sont
plus allongés et situés plus près de la base ; la bordure en brosse est bien développée.

Il est intéressant que dans la couche musculaire, encore plus développée
dans le rectum, les fibres circulaires forment la couche externe, tandis que les
fibres longitudinales forment une couche interrompue interne (fig. 12, PL. 1v).

Les cellules pigmentaires noires, abondantes dans la muqueuse, donnent
une couleur noirâtre au rectum (fig. 12, PI. 1v).

Les parties accessoires du canal digestif sont : le foie, le pancréas et la rate:
cette dernière est réunie au canal digestif seulement anatomiquement.

Le foie est très grand et est formé de deux lobes : antérieur et postérieur,
presque de même grandeur. De chaque lobe sort un conduit; puis ces deux
conduits s'unissent en une partie commune très courte,qui s'ouvre dans le duodénum
(dans son arc antérieur), comme nous le voyons sur la fig. 15, Pl.m. La vésicule
biliaire est complètement réduite, ce qui est très rare chez les téléostéens, où elle
forme une vésicule extrêmement petite, arrondie, s’ouvrant dans le court conduit
commun (ductus choledochus) mentionné plus haut.

Sur toutes mes préparations le tissu hépatique n'était pas fixé assez bien
pour un examen histologique et c'est pourquoi je dois me contenter d’une
description macroscopique de cet organe. Je remarque seulement que dans la
partie périphérique amincie du foie il y a un grand nombre de troncs artériels,
munis de parois d'une épaisseur extrême et exceptionnelle, ce qui dépend d’un
très fort développement du tissu conjonctif fibrillaire.

Le pancréas. — Cet organe chez Gastrostomus est formé d’un grand nombre
de tubules ramifiés réunis les uns avec les autres (anastomoses), dispersés dans
un tissu fbrillaire lâche, qui forme un corps prismatique triangulaire, situé entre

l'estomac et la partie large de l'intestin et réuni à l’aide de plusieurs prolongements
de ce tissu avec les parois stomacale et intestinale (fig. 1 et 15, PL. iv, grossissement
plus fort). Les anastomoses entre les tubules pancréatiques sont visibles sur la
fig. 14, PI. 1v.

Sur les coupes transversales par ce corps on voit que dans le tissu conjonctif
fibrillaire sont plongés : 1° les tubules glandulaires du pancréas ; 2° les plus
étroits et les plus vastes conduits pancréatiques ; 3° le grand conduit principal,
ductus pancreaïicus ; 4° un grand nombre de vaisseaux sanguins ; 5° deux ou
trois très grandes îles de cordons cellulaires de Langerhans.

La structure des tubules pancréatiques glandulaires mêmes est typique. Une
couche de cellules épithéliales pyramidales, larges aux bases et plus étroites aux
sommets, limitent la cavité étroite centrale d’un tubule, tapissée encore par des
cellules très aplaties centrales (centroacinäre Zellen). Ces dernières sont très pauvres
en protoplasme, de sorte que sur les coupes leurs noyaux aplatis presque seuls
sont visibles.

La cellule glandulaire contient un protoplasme alvéolaire et des granules
caractéristiques qui se colorent intensivement par l'éosine et sont accumulés
principalement ou plus souvent exclusivement dans la partie centrale plus étroite
de la cellule, autour de la cavité glandulaire. Les noyaux ronds des cellules
glandulaires sont situés aux bases et pauvres en chromatine.

On voit les coupes par les tubules pancréatiques sur la fig. 8, PI. 1v. Entre les
tubules on rencontre beaucoup de conduits coupés dans différentes directions. Ils
sont tapissés par une couche de cellules épithéliales cubiques.

Les conduite plus gros sont munis d'une couche spéciale de tissu conjonctif
fibrillaire et en dehors de celle-ci d'une mince couche de fibres musculaires lisses,
circulaires. |

Le conduit principal montre sur la coupe transversale une image très carac-
téristique, car un grand nombre de conduits étroits secondaires s'ouvrent
radialement dans la cavité du conduit principal et plusieurs de ceux-ci montrent
aussi sur la même coupe une division dichotomique (fig. 15, PL. iv, c. p.). Autour
du conduit principal se trouve une couche spéciale de tissu conjonctif fibrillaire
et en dehors de celle-ci une couche de fibres musculaires lisses, circulaires ;
enfin en dehors de cette dernière on voit çà et là des fibres musculaires isolées
longitudinales (fig. 15, PI. 1v). Le conduit principal, ainsi que les conduits
secondaires plus étroits et les tubules glandulaires sont tous plongés, comme on l’a
dit déjà, dans un tissu fibrillaire lâche commun.

La raie (lien) est en connexion anatomique très intime avec le pancréas,
se trouvant dans l'angle interne (dirigé vers l'estomac) du corps prismatique
triangulaire de tissu conjonctif fibrillaire, qui contient des tubules pancréatiques
et leurs conduits. La position de la rate est bien visible sur la coupe transversale par
ce corps (fig. 9, PI. 1v).

— 33 —

Cet organe a la structure suivante. A l'extérieur se trouve une membrane
extrêmement mince de tissu conjonctif fibrillaire, qui passe intérieurement en
un réticulum très fin avec des noyaux allongés. Ceux-ci n'appartiennent pas aux
cellules attachées au réticulum, mais au réticulum même, qui présente ainsi un
système continu de cellules ramifiées, réunies ensemble. Dans les mailles de ce
réticulum on voit des leucocytes assez riches en protoplasme (fig. 4, PI. rw).
Le réticulum se trouve seulement à la périphérie de l'organe, où il forme une
couche assez mince, tandis que la plus grande partie de celui-ci est formée de
trabécules de tissu conjonctif fibrillaire assez compact et de lacunes sanguines entre
ces trabécules, tapissées par un endothélium.

Dans le tissu des trabécules se trouve un très grand nombre de capillaires
sanguins. Les noyaux de ce tissu conjonctif sont fortement allongés, divisés à
une extrémité en deux parties plus grosses, tandis que l’autre extrémité est amincie
et unique. Souvent on voit aussi des noyaux renflés aux deux extrémités et amincis
au centre. Ces noyaux caractéristiques sont visibles sur la fig. 4, PL. rv.

Dans les lacunes sanguines on trouve partout un grand nombre de leucocytes
du même type que dans le réticulum périphérique.

Chez deux individus de Gastrostomus j'ai trouvé devant la rate une formation
directement réunie avec celle-ci; sur les coupes transversales cette formation
se présente sous forme d’un triangle, dont la base est réunie avec le corps du
tissu conjonctif contenant les tubules pancréatiques (fig. 5, par. L., PI. rv). Je la
nomme paralien et je pense qu'elle constitue une partie modifiée et différenciée
de la rate, une sorte de rate accessoire. |

Cet organe est formé d'un tissu gélatineux renfermant un très grand nombre
de capillaires sanguins, de leucocytes et de cellules allongées et ramifiées, avec
des noyaux ovoïdes ou fortement allongés. Dans la gelée représentant la substance
basale intercellulaire de ce tissu, il y a beaucoup de fines fibrilles.

Une petite partie de tissu de cet organe est visible sur la fig. 3, PI. rv, colorée
par l’hématoxyline ferrique de Heidenhain et l'orange.

II. Le canal digestif de Melamphaes mizolepis {Günther).

La structure macroscopique du canal digestif du Melamphaes mizolepis est
la suivante : (fig. 12-14, PI. im).

La cavité buccale passe en un œsophage assez long et vaste, qui sans modifier
son diamètre et sans limite distincte se prolonge directement dans l'estomac.

Du côté droit de l'estomac, en avant de son extrémité postérieure (cul-de-sac)
sort l'intestin pylorique (duodénum) dirigé en avant et droit, où s'ouvre le conduit
hépatique. Le duodénum est muni à son extrémité d’un sphincter ; en s'élargissant
ensuite il forme la partie moyenne de l'intestin, qui au commencement s'étend
derrière le foie, étant là munie des 4-5 grands appendices pyloriques dirigés en

5. N.

arrière ; ceux-ci ne sont pas séparés complètement l’un de l’autre à leurs bases
(fig. 12, PL 1).

Cette partie élargie de l'intestin se dirige ensuite en arrière, forme ici un
arc et s'étend en avant, pour se diriger de nouveau en arrière et former un
second arc; puis va en avant, forme un troisième arc et après avoir formé un
quatrième arc se dirige enfin en arrière comme rectum. En un mot l'intestin
moyen, c'est-à-dire la partie intestinale entre le duodénum et le rectum, forme
quatre arcs ou courbures : deux antérieures et deux postérieures (fig. 14, PI. im).

Le foie est formé de deux grands lobes, droit et gauche, qui à leur tour
sont lobés en plusieurs parties ; la vésicule biliaire est réduite. |

L’æsophage, comme nous l'avons dit, est vaste et long. Il est tapissé par
un épithélium formé de plusieurs couches de cellules, dont les basales sont
un peu plus hautes que les autres, arrondies ou polygonales. Cet épithélium est
très riche en cellules mucinogènes (Becherzellen) sacculiformes, sans tiges basales.
La muqueuse forme beaucoup de plis longitudinaux et bas.

Dans le tissu conjonctif fibrillaire sous-épithélial on distingue deux couches :
une interne très compacte, sorte de siratum compacium, presque dépourvue
de cellules et une externe lâche, très riche en cellules et en vaisseaux sanguins
(fig. 8, PI. v). En dehors de celle-ci se trouve une couche musculaire striée, formée
principalement de fibres circulaires. Seulement à la base des plis on voit des
fibres isolées longitudinales, en nombre très restreint. |

La couche de tissu fibrillaire, qui se trouve en dehors de la couche musculaire,
est en général mince, mais du côté droit elle est très épaisse, forme ici un
épaississement local de la paroi œsophagienne, extrêmement riche en leucocytes
éosinophiles et cyanophiles réunis en grandes accumulations autour des vaisseaux
sanguins, parmi lesquels il y a des troncs assez grands (fig. 8, PI. v). Cet épais-
sissement se prolonge en arrière sous forme d’un corps de tissu conjonctif, situé
entre l’estomac, le duodénum, la partie moyenne de l'intestin et les appendices
pyloriques et renfermant de nombreux tubules pancréatiques et des accumulations
de leucocytes (fig. 7, PI. v).

Sans aucune limite externe l’æœsophage se prolonge en un estomac. Seulement
sur les coupes longitudinales on voit où commence celui-ci c’est-à-dire où
apparaît l’épithélium stomacal typique avec les glandes typiques. La plupart
des glandes stomacales se trouvent du côté gauche de la paroi stomacale et au
fond de l'estomac; on peut les nommer toutes « glandes du fond stomacal »
(Fundusdrüsen).

Du côté droit, au-dessus du point où le sac stomacal se prolonge en une
partie étroite et se recourbe à droite (commencement de l'intestin pylorique)
on voit seulement deux conduits glandulaires principaux, appartenant aux deux
groupes de glandes stomacales, qu'on peut nommer glandes pyloriques (Pylorus-
drüsen). On voit ces relations sur la fig. 7, PI. v.

ee

Ici déjà on peut remarquer que ces deux sortes de glandes stomacales
possèdent presque la même structure; seulement dans les glandes pyloriques
les ramifications des conduits et des tubules glandulaires ne sont pas aussi
nombreuses que dans les glandes du fond.

L'épithélium stomacal ne présente rien d’extraordinaire. Les cellules cylin-
driques sont très hautes, élargies au sommet, où elles sont munies d’un « tampon »
(Pfropf), ici plus petit que chez plusieurs autres poissons examinés par moi.
Les noyaux allongés sont situés au centre des cellules (fig. 5 et 19, PI. v).

Entre les cellules épithéliales j'ai trouvé un nombre assez grand de petits
leucocytes, dont les noyaux se colorent beaucoup plus intensivement que les
noyaux de l'épithélium et dont le protoplasme forme une couche très mince autour
des noyaux (fig. 5 et 19, PI. v).

Sans changer de structure, l’épithélium forme aux régions glandulaires
des enfoncements tubuleux, c'est-à-dire des conduits principaux de glandes,
qui se divisent dichotomiquement en 2, 4, 8 ou tout de suite en plusieurs branches
plus minces (conduits secondaires), comme on le voit sur la fig. 5, PI. v.

Dans les conduits secondaires l'épithélium devient graduellement de plus
en plus bas, les « tampons » disparaissent et enfin on voit un épithélium cubique,
entouré, comme dans le conduit principal, par une mince couche de tissu
fibrillaire lâche de la muqueuse stomacale. Cette couche est très visible sur
la fig. 5, PI. v (préparation colorée par l'hématoxyline de Krüger ; à laide de
cette excellente méthode, sur la même préparation l’épithélium se colore en bleu
et le tissu conjonctif en brun).

Les conduits plus étroits passent directement aux tubules glandulaires,
plusieurs fois divisés dichotomiquement et recourbés (fig. 5, PI. v à gauche);
c'est pourquoi dans chaque groupe glandulaire, possédant un conduit principal
commmun, on voit sur les coupes plusieurs tubes glandulaires coupés et entre
ceux-ci de nombreux vaisseaux sanguins. |

Dans la plupart des cas les parties terminales des tubes glandulaires se divisent
en deux courts tubules, un peu élargis au bout, où il finissent en cul-de-sac
Miss Pl v)

Les cellules épithéliales glandulaires sont cubiques ou un peu aplaties,
ordinairement un peu renflées au centre, où se trouve le noyau qui est partout
situé à la base (fig. 6, PI. v). Dans le protoplasme de ces cellules on peut distinguer
une partie externe (périphérique) granuleuse, se colorant ordinairement un peu
plus fortement et une partie interne çà et là vacuolisée, avec des granulations
plus fines, se colorant moins fortement. Les noyaux sont ronds, assez grands,
avec un réticulum de chromatine.

Dans le tissu conjonctif sous-épithélial de la paroi stomacale on trouve des
fibres musculaires lisses (principalement longitudinales), isolées, qui répondent
à la muscularis mucosæ et disparaissent partout où se trouvent les glandes

sé DE

Stomacales bien développées. On voit bien ces fibres du éôté droit, entre les
deux groupes de glandes pyloriques, et aussi en avant ét en arrière de ces groupes
(fig. 7, PE vi.

La couche musculaire /muscularis) est formée de fibres lisses.

Du côté droit de la paroi stomacale on trouve seulement une couche circulaire
de fibres musculaires groupées en faisceaux ; la couche longitudinale manque
ici. Au contraire, du côté gauche et au fond de l'estomac nous voyons deux
couches de fibres musculaires : une interne de fibres circulaires groupées en
faisceaux et une externe de fibres longitudinales (fig. 7, PI. v).

La partie postérieure de l'estomac, rétrécie et dirigée à droite, a l'apparence
stomacale, mais au point de vue histologique ce n’est déjà plus l'estomac, mais
l'intestin pylorique (duodénum), dans lequel elle passe sans aucune limite distincte.

Je nomme cette partie intestin, parce qu'elle ne renferme plus de glandes
stomacales, quoique son épithélium ait encore un caractère stomacal (présence des
€ tampons »). La paroï de l'intestin pylorique est plus épaisse que celle de l'estomac
et spécialement la couche musculaire (muscularis) est ici beaucoup plus développée
que dans l’estomac. On trouve ici au-dessous de l’épithélium des fibres isolées
de la muscularis mucosæ. La muscularis même se compose d’une couche externe
longitudinale et d’une couche interne circulaire ; celle-ci est très épaisse et ne
montre pas de faisceaux isolés (comme dans l'estomac), mais une couche continue
d'épaisseur variable, ce qu'on voit bien sur une coupe longitudinale (fig. 7, PL. v).

Dans la partie terminale, étroite, de l'intestin pylorique la couche de fibres
musculaires circulaires forme un sphincter (fig. 7, PL. v), derrière lequel l'intestin
s'ouvre dans un organe que je nomme intestin moyen, beaucoup plus vaste,
mais aux parois beaucoup plus minces.

La structure de l'intestin moyen, c'est-à-dire de la partie intestinale située
entre l'intestin pylorique et le rectum, avec les appendices pyloriques, est presque
partout la même. Les différences concernent seulement l'épaisseur des parois,
en général petite, mais dans les parties basales des appendices pyloriques elle
est plus grande que dans d’autres parties, ce qui dépend ici d’une plus grande
épaisseur de la couche musculaire circulaire (fig. 7, PI. v).

Partout dans l'intestin moyen on trouve une couche d’épithélium haut,
cylindrique. Chaque cellule épithéliale (fig. 17, PL. v) est élargie au sommet et
amincié à la base. Le protoplasme est alvéolaire mais dans les alvéoles on voit
des corpuscules sphériques (granules) assez grands, un peu réfringents. Près du
sommèt le protoplasme est plus dense, très finement granuleux et ne renferme
pas de corpuscules. La surface libre du sommet cellulaire porte une brosse,
dont les éléments sont parfois si grands et isolés, qu’ils donnent l'aspect de cils.
À la base de chaque élément de la brosse se trouve un corpuscule basal extrêmement
petit, qui se colore intensivement par l'éosine ou par l’hématoxyline ferrique
de Heidenhain. Le noÿau est ovoïde et situé plus près de la base ; la chromatine
forme un délicat réseau central et une couche périphérique.

=

Entre les cellules épithéliales décrites se trouve un nombre assez grand de
cellules mucinogènes (Becherzellen) munies d'un protoplasme alvéolaire et d’une
tige plasmatique basale, mince, au-dessous du noyau (fig. 18, PI. v). Outre celles-ci
on trouve encore une autre sorte de cellules très intéressantes, qu'on pourrait au
premier abord prendre pour des cellules glandulaires. En vérité ce sont les cellules
caliciformes, assez élargies, arrondies à la base où se trouve le noyau et munies
d'un orifice au sommet. La hauteur de ces cellules fait 1/3 ou 1/2 de la hauteur
des cellules épithéliales voisines (fig. 16, 18, 15, PI. v).

Le contenu de ces cellules est une substance qui se colore intensivement
en rouge par l’éosine et possède la forme de baguettes ou de corpuscules bacil-
liformes et sphériques, plongés dans une substance homogène plus pâle (fig. 15,
16, 18, PI. v).

Le protoplasme est accumulé principalement à la base, où se trouve le noyau
ovoïde, très souvent muni de plusieurs ou plus rarement d’un seul long et mince
prolongement, dirigé vers le sommet cellulaire (fig. 16, PI. v). Assez souvent le
contenu coule au dehors par l’orifiice du sommet (fig. 16, PI. v, à gauche).

Il faut se demander si les cellules décrites sont glandulaires ou si ce sont
peut-être certains organismes parasites protozoaires, vivants dans la paroi intestinale.
En faveur de la dernière opinion semble parler la forme du contenu : baguettes
et corpuscules bacilliformes ou sphériques.

Mais on pourrait aussi prendre ces formations pour des glandes unicellulaires,
en se basant sur les faits suivants : 1° elles ont toujours la même forme et la
même grandeur caractéristique, ce qui probablement n'aurait pas lieu, si c'étaient
des parasites endocellulaires ; 2° les baguettes et les corpuscules bacilliformes
ou sphériques ne semblent pas être des organismes parasites, parce qu'ils ne
renferment, au premier coup d'œil, aucune substance nucléaire (chromatine) et
sont formés d’une substance homogène ; 3° on rencontre des cellules où le contenu
(sécrétion ?) coule au dehors par l’orifice au sommet de la cellule.

Néanmoins l’analyse détaillée a démontré que les formations décrites ci-dessus
sont des parasites, qui diffèrent beaucoup de tous les protozoaires parasites
connus. |

Nous avons ici à faire avec un nouveau type de protozoaire parasite et
quoique mes recherches sur cet organisme soient seulement fragmentaires, les
faits que j'ai observés démontrent assez sûrement sa nature parasitaire d’un
nouveau type.

J’ai trouvé cet organisme dans la paroi intestinale de Melamphaes mizolepis
et de Stomias boa. Maintenant je pense que les formations décrites et dessinées
par moi chez Sternoptyx diaphana sur les fig. 20 et 21, PI. v dans la première
partie de ces études (Fascicule Lvin) comme glandes séreuses unicellulaires sont
aussi des parasites.

Je nomme cet organisme Bathymyxium piscium pour désigner qu'il appartient

=

aux Myxosporidies et est un parasite des poissons de grande profondeur. Plus
loin, dans un appendice spécial à la fin de ce chapitre, je donnerai la description
de cet organisme. |

L'intestin rectal (rectum) a une structure peu différente de celle de l'intestin
moyen. |

L'épithélium est ici un peu plus haut (fig. 15, PI. v). Nous y avons rencontré
beaucoup de petits leucocytes avec des noyaux qui se colorent intensivement,
un grand nombre de cellules mucinogènes munies d’une tige basale et de cellules
caliciformes beaucoup plus basses, complètement de même caractère que dans
l'intestin moyen (fig. 15, PL. v).

La paroi de l'intestin rectal est plus épaisse que celle de l'intestin moyen,
ce qui dépend d’un développement plus fort du tissu fibrillaire sous-épithélial,
dans lequel il y a beaucoup de vaisseaux sanguins, de leucocytes éosinophiles
(fig. 9, PI. v) et, dans la partie la plus postérieure du rectum, beaucoup de cellules
pigmentaires noires.

Directement sous l'épithélium on distingue une mince couche de tissu
fibrillaire presque homogène, avec des noyaux ovoïdes, qui se colore un peu plus
intensivement que la partie plus externe; c’est une sorte de membrane basilaire
(Ag. 9, 15, PI. v).

La musculature (muscularis), dans le rectum, est aussi formée de deux couches
de fibres lisses : d’une interne circulaire et d’une externe longitudinale. Dans
celle-ci on trouve çà et là une accumulation plus grande de fibres, ce qui cause
des épaississement locaux de cette couche (fig. 9, PI. v). Entre les deux couches
on voit beaucoup de vaisseaux sanguins.

Le foie. — La structure de cet organe chez Melamphaes présente quelques
particularités intéressantes. Comme dans le foie des téléostéens en général,
il y a ici un système de trabécules épithéliales, qui courent dans différentes
directions et sont réunies ensemble ; entre ces trabécules se trouvent partout
les capillaires sanguins.

La disposition de ces trabécules est visible sur la fig. 4, PL. vir, qui représente
une coupe transversale par une partie du foie chez une autre espèce, notamment
chez Siomias boa, mais les relations chez Melamphaes sont identiquement les
mêmes.

Chaque trabécule épithéliale Daohte un tubule, dont la lumière centrale,
limitée par une couche de cellules, est extrêmement étroite et c’est pourquoi
on la voit seulement sous des grossissements très forts, le mieux sur les coupes
transversales par le tubule (fig. r1, PL v). Le plus souvent sur une coupe trans-
versale par le tubule on trouve $ ou 6 cellules qui limitent l'étroite lumière.
Elles sont polygonales où un peu arrondies ; leur partie interne (centrale) est
amincie, leur partie périphérique élargie. Le protoplasme de la partie centrale,
beaucoup plus petite, est très finement granuleux, tandis que dans la partie

périphérique il a une structure alvéolaire. Entre ces deux parties ou plus rarement
dans la partie granuleuse même se trouve le noyau assez petit, rond, pauvre
en chromatine. Sur les préparations colorées par l’hématoxyline avec l’éosine
le protoplasme des cellules hépatiques se colore en rouge et les granulations
des parties cellulaires centrales obtiennent aussi une coloration rougeâtre.

Le diamètre d’une cellule hépatique a environ 10w. Comme je l’ai déjà
dit, entre les tubules hépatiques on voit de nombreux vaisseaux sanguins
capillaires. Assez souvent on trouve entre les tubules et même entre les cellules
hépatiques des cellules caractéristiques solitaires, qui se colorent intensivement
par l’hématoxyline (avec l’éosine). Notamment le protoplasme se colore faiblement
en bleu et les granules, qui se trouvent en abondance dans le protoplasme, en
bleu foncé. Ces cellules solitaires sont ovoïdes ; leur noyau, assez riche en
chromatine, est rond ou un peu allongé, situé près de la périphérie. On peut
les désigner comme cellules cyanophiles (fig. 11, PI. v c. c.). |

On pourrait les prendre pour des éléments répondant aux cellules « étoilées »
(Sternzellen) dans le foie des Mammifères. Cette homologie me semble d'autant
plus juste que ces cellules se trouvent en relation très intime avec les parois
de vaisseaux sanguins, comme les « cellules étoilées » dans le foie des Mam-
mifères. |

Sur la fig. 11, PI. v on voit que la cellule cyanophile /c. c.) est réunie avec
une membrane qui constitue la paroi d’un vaisseau sanguin coupé (ce que montre
une série de coupes). Sur la fig. 12, PI. v on voit aussi une cellule cyanophile
{c. c.} en connexion directe avec un capillaire; la fig. 10, PI. v présente les
mêmes relations, seulement une autre cellule semblable est visible à l’intérieur de
ce vaisseau.

J'ai dit que les capillaires biliaires très étroits se trouvent au centre de tra-
bécules épithéliales hépatiques. Les conduits biliaires plus grands ont déjà leur
propre paroi, formée d’une couche protoplasmique avec des noyaux arrondis
construits souvent de deux ou trois fragments réunis ensemble. Un conduit biliaire
étroit et un autre plus vaste se voient sur la fig. 10, PI. v (c. b.).

Le conduit hépatique principal est tapissé par une couche de cellules cylindriques
et muni de fibres musculaires lisses circulaires.

Enfin parmi les cellules hépatiques j'ai aussi rencontré des éléments repré-
sentés sur la fig. 11, PI. vx. Pour moi ce sont des formations énigmatiques.
Une telle cellule a une forme semi-lunaire, elle est munie d’un noyau rond,
comme dans les autres cellules hépatiques. D’un côté elle limite la cavité centrale
limitée de tous les autres côtés par les cellules hépatiques ordinaires. Je ne peux
pas dire si ces cavités centrales constituent une sorte de réservoir biliaire ou si ce
sont peut-être des « artefacta » causés par une contraction locale de certaines
cellules hépatiques.

Autour de plus grands vaisseaux sanguins, qui se trouvent principalement près

— 40 —

de la périphérie du foie, on voit très souvent de grandes accumulations de lym-
phocytes situées entre les plus petits vaisseaux, qui accompagnent les vaisseaux plus
grands (fig. 10 et 12, PI. v).

Parmi ces lymphocytes on voit des éléments éosinophiles et des cellules qu’on
peut nommer érythroblastes ; on trouve même diverses formes de passage entre
ces cellules et les érythroblastes (fig. ro et 12, PI. v). |

Ainsi on peut admettre que le foie joue un certain rôle dans la production
des érythrocytes, comme chez les Vertébrés plus élevés pendant la vie em-
bryonnaire.

Dans le foie se trouve encore le tissu conjonctif : notamment entre les tubules
hépatiques on voit cà et là des cellules allongées fusiformes avec des noyaux
ovoïdes ou plus fortement allongés (fig. 13, PI. v) Or sur les préparations
fortement lavées à l’eau et sur lesquelles, à cause de cela, un certain nombre
de cellules épithéliales se sont détachées, on voit bien que les noyaux allongés
appartiennent à un fin réseau fibrillaire-réticulé (fig. 14, PL. v).

La substance qui sépare les cellules hépatiques voisines, sorte de ciment
intercellulaire, semble être en connexion directe avec les éléments du réticulum
(fig. 14, PI. v).

Enfin la surface externe du foie est couverte par une couche extrêmement
mince de cellules très aplaties avec des noyaux allongés (fig. 10 et 12, PL. v).

Le pancréas a la même structure que chez d’autres poissons décrits par moi.
Les tubules pancréatiques sont plongés dans un tissu fibrillaire conjonctif, qui
s'étend entre l'estomac, la partie antérieure de l'intestin moyen et les parties basales
des appendices pyloriques (fig. 7, PI. v).

APPENDICE.

Bathymyxium piscium nov. g. nov. sp., protozoaire parasite
de l'intestin de Melamphaes mizolepis et de Siomias boa.

Dans l'intérieur des cellules et entre les cellules épithéliales de l'intestin
moyen et du rectum chez Melamphaes et Siomias un grand nombre de cellules
amibiformes se trouvent, qui représentent sans doute une jeune phase du dévelop-
pement de l'organisme nommé ci-dessus.

La grandeur de ces individus amibiformes est différente. J’ai vu des individus
d'un diamètre de 2.5 y jusqu’à 4.5 . Le protoplasme est homogène et se colore par
l'hématoxyline avec l'éosine beaucoup plus en rouge que le protoplasme des
cellules épithéliales. Le noyau est rond, il est partout situé dans une vacuole

— 41 —

centrale et se colore intensivement. Souvent le protoplasme émet plusieurs
très courts pseudopodes aigus. Très souvent j'ai trouvé des phases de multipli-
cation de ces organismes amibiformes. Le plus souvent l'organisme se divise en
deux parties : le noyau s’allonge, devient biscuitiforme et se déchire au milieu ;
en même temps le protoplasme se divise aussi (fig. 1-10, PL. vi). La multiplication
est si rapide que très souvent après la division du noyau, mais encore avant la
division du protoplasme, les noyaux commencent de nouveau à se diviser (fig. 1-10,
PI. vr). |

Je pense que l'organisme amibiforme peut aussi se diviser directement en
plusieurs parties, car j'ai souvent vu le noyau montrer un nombre plus grand
(5-7) de lobes, sorte de boutons amincis à la base et élargis au sommet, où
Ja chromatine s’est accumulée plus abondament, ce qui démontre une énergique
multiplication de notre organisme. J’ai observé aussi des individus contenant
un nombre assez grand de petits noyaux ronds, fortement colorés (fig. 1-10, PI. vi),
avec le protoplasme différencié autour de ces noyaux et la fragmentation de ces
éléments en un grand nombre de cellules très petites.

Mais le plus souvent les individus amibiformes se multiplient par division
en deux cellules. Très souvent on voit que ces deux cellules, encore réunies
ensemble, sont placées dans le protoplasme de deux cellules épithéliales voisines
de la paroi intestinale, comme on le voit sur les fig. 1-10, PI. vr.

J'ai trouvé des endroits où l’épithélium intestinal était rempli par ces parasites
amibiformes et où on pouvait observer différentes phases d'involution de cet
épithélium.

La sporulation constitue un second moyen de reproduction de notre organisme.

Jé n'ai pas observé de phénomènes de reproduction sexuelle, mais je
peux admettre que les dérnières générations des individus amibiformes sont
probablement des gamétocytes (isogamètes ?) se réunissant par paires pour former
des sporoblastes. C’est mon hypothèse sur ce point.

La sporulation montre un type très caractéristique et original, mais à cause
de l'extrême petitesse des spores je n'ai pas pu observer les détails dans la
modification des noyaux pendant l'évolution des spores.

Sporulation. — L'individu amibiforme croît et après avoir obtenu une certaine
grandeur, s'entoure d'une membrane résistante et forme ainsi un kyste. Les
kystes sont ovoiïdes ; leur diamètre transversal est 5-7.5 y, le diamètre longitudinal
14-16 u. Le noyau se trouve à l’un des deux pôles du kyste. Ils sont situés
dans l’épithélium de sorte que leur long diamètre est partout perpendiculaire
à la surface interne de celui-ci ; or les noyaux se trouvent au pôle distal ou externe
(basal) du kyste. Ce pôle est ordinairement un peu plus large que le pôle
proximal (interne), comme on le voit sur les fig. 11-16, PI. vi. Le noyau a la forme
d'un fer à cheval, convexe vers la membrane du kyste, concave vers le pro-
toplasme, qui se colore en rougeâtre par l’hématoxyline avec l'éosine. Le
noyau renferme un fin réseau de chromatine. 6 N.

Lorsque la formation des spores commence, le noyau subit des modifications
très intéressantes. Il émet vers le protoplasme 8-16 prolongements très délicats,
presque filiformes. Souvent deux ou trois prolongements forment à la base une
tige commune (fig. 11-16, PI. vi).

Autour de chaque prolongement, comme autour d’un axe, s’amasse une
partie du protoplasme, épaissie à la base, amincie au sommet (fig. 11-16, PI. vi)
en formant une sorte de petites massues protoplasmiques avec des prolongements
du noyau. Ces derniers s’isolent bientôt du noyau maternel.

Dans chaque kyste se forment 8 ou 16 cellules allongées semblables, qui se
transforment en 8 ou 16 spores. Je n’ai pu constater le mode de leur formation
à cause de leur extrême petitesse.

Les spores ont la forme de petits citrons, dont un des pôles, que nous
nommons supérieur est plus aigu que l’autre, inférieur. Au pôle supérieur la
membrane externe, épaissie, recoit après la coloration par le liquide d’'Ehrlich-
Biondi-Heidenhain (Biondi-Heidenhaïinische Dreifärbelüsung) une couleur intense
Cérise (fs, 43, 14, 16, PES: |

Le pôle supérieur se prolonge en un fil rigide, assez long, délicat, tandis
que le pôle inférieur forme un fil beaucoup plus court. Les bases de ces deux
fils sont réunies par un fil qui forme l’axe de la spore, comme on le voit bien
sur les coupes transversales par les spores (fig. 14, 15, PI. vn. Ces filaments, sur
les préparations colorées par le liquide d’'Ehrlich-Biondi-Heidenhain, prennent
aussi la couleur cerise.

Le noyau semble se trouver au centre de la spore, mais comme il se colore
très faiblement, 1l est très difficile d'étudier sa forme et sa position.

La longueur de la spore (sans le fil polaire) est environ de 2.5 w; la longueur
du fil antérieur 5-5.5x, le diamètre transversal de la spore, où elle est le plus
large, a 1-2 p. |

Il est digne de remarque que le noyau maternel ne s'use pas complètement
pendant la formation des noyaux des spores, car il reste toujours un noyau dans
le kyste adulte, qui renferme des spores complètement développées. Ce noyau
est situé à la base du kyste, il est aplati et a la forme d’un fer à cheval, comme
dans le kyste avant la formation des spores (fig. 11-16, PI. vr).

Le kyste, qui renferme les spores développées, s'ouvre au sommet et par
l'orifice ainsi formé elles pénètrent dans la cavité intestinale.

Je pense que dans un même kyste les spores peuvent se former plusieurs fois.

Comme je l'ai déjà dit, j'ai trouvé 8 ou 16 spores dans chaque kyste ; si le
nombre est 16, les spores sont presque deux fois plus minces que dans le cas
où on en trouve 8. La longueur est dans les deux cas la même.

Il est difficile de dire quelle est la position de notre parasite dans le système.

Je pense qu'il appartient peut-être aux Cnidosporidies et spécialement, à
cause des dimensions extrêmement petites des spores, aux Microsporidies.

Cependant chez notre organisme la membrane de la spore n'est pas formée de
deux tests, comme chez les Cnidosporidies typiques et la spore ne renferme pas de
« capsules polaires » caractéristiques aussi pour les Cnidosporidies. Mais il y a des
Cnidosporidies dépourvus de deux tests et de capsules polaires. Doflein s'exprime
sur Ce sujet (1911, p. 870): « für eine Anzahl von Microsporidien ist die Zusam-
mensetzung der Hülle aus zwei Schalen, wie bei den Myxosporidien, nachgewiesen ;
doch ist für manche Arten die Bildung der Sporenhülle aus einem Stück
wahrscheinlich. Bei vielen Microsporidien ist keine Polkapsel nachweisbar, bei
manchen nicht einmal ein Polfaden... ».

Ainsi nous voyons que l’absence de deux tests et de capsules polaires n'empêche
pas de mettre notre parasite parmi les Microsporidies. Le long fil antérieur répond
au fil polaire (Polfaden) des Microsporidies typiques.

Pérez et Doflein (1911) divisent celles-ci en trois légions : 1° Polysporogenea
(Doflein) ; 2° Oligosporogenea (Doflein) ; 3° Monosporogenea (Pérez). Notre parasite
doit être classé parmi les Oligosporogenea.

III. Ze canal digestif du Stomias boa.

Cet organe (fig. 10, a, b, PI. m) est formé : 1° de l’œsophage ; 2° de l'estomac ;
3° de l'intestin pylorique (duodénum) ; 4° de l'intestin moyen et rectal sans limite
distincte. |

L'æœsophage, dont les parois sont, comme les paroïs stomacales, profondément
noires, passe à l'estomac sans limite externe et sans modifier son diamètre.
L'estomac est très long, cylindrique, sacciforme. Plus bas nous verrons que
quoique la structure interne de l'estomac diffère un peu dans les parties antérieure
et postérieure, néanmoins dans toute la longueur elle répond à la structure
caractéristique pour l'estomac (présence de glandes stomacales, structure de
l’épithélium). |

L'intestin pylorique sort de l'estomac en avant et à droite et diffère de
celui-ci par la couleur blanche de sa paroi. Il se dirige en avant jusqu’au foie,
où il s'amincit, s’aiguise en formant ici une sorte d’un cul-de-sac. De la base de
celui-ci commence un autre rameau d'intestin pylorique, qui se dirige en arrière
et passe directement à l'intestin moyen sans aucune limite externe. L'intestin
moyen s'étend directement en arrière, parallèle à l'estomac, sans aucune courbure :
il passe sans limite distincte à un court intestin rectal, un peu plus étroit.

Le foie est assez grand, allongé, très peu lobé, élargi en avant, aminci en
arrière, muni d'une grande vésicule biliaire ayant la forme d’unS, située entre
la surface concave (interne) du foie et la paroi œsophagienne. Les conduits
hépatique et cystique s'unissent en un canal bihaire commun (ductus choledochus)
qui s'ouvre dans l'intestin pylorique.

Sur la longueur de l'intestin (et aussi de l'estomac chez plusieurs exemplaires)

?

ne
s'étendent des cordons aplatis de tissu adipeux, jaunâtres (fig. 10 p., PI. im), qui
s'unissent en avant. Comme nous le verrons plus bas, dans le tissu adipeux
de ces cordons se trouvent les nombreux tubules pancréatiques avec leurs conduits.

Enfin on voit, en connexion intime avec l'œsophage, du côté ventral de
celui-ci, un organe un peu énigmatique, que je prends (en partie) pour une glande
thyroïdienne et c’est en me basant sur sa structure histologique, comme nous
le verrons plus bas.

La structure histologique du canal digestif de Siomias montre beaucoup
de particularités intéressantes.

L'œsophage possède une paroi assez forte et montre beaucoup de plis longi-
tudinaux (fig. 20, PI. vi). Ceux-ci sont formés par un épithélium et par un tissu
conjonctif fbrillaire, dans lequel on distingue deux couches ; une interne plus
compacte, se colorant plus intensivement et une externe, plus lâche. Dans la
partie antérieure de l’œsophage l’épithélium possède une structure différente
de celle de la partie postérieure. Dans la première on trouve un très grand
nombre de cellules mucinogènes caliciformes (Becherzellen), sans tiges basales,
avec les noyaux à la base. Parmi ces cellules, prépondérantes entre les cellules
épithéliales de l’œsophage, se trouvent aussi les cellules ordinaires cylindriques,
avec des noyaux ovoïdes au centre. ÇCà et là on voit deux couches de cellules
épithéliales ordinaires entre les cellules glandulaires : cellules basales plus hautes,
superficielles plus basses.

Enfin, aussi dans la partie antérieure de l’œsophage, on trouve un nombre
restreint de cellules glandulaires, renfermant de grands granules, qui se colorent
intensivement en rouge par l’éosine ; le noyau est situé à la base. Très proba-
blement ce sont les cellules glandulaires séreuses.

Dans la partie postérieure de l’œsophage la structure de l’épithélium change.
On voit ici un nombre plus petit de cellules glandulaires mucinogènes, qui ont
la même structure, mais sont moins élargies que dans la partie antérieure.
Parmi ces cellules on voit des cellules épithéliales ordinaires, qui donnent
partout deux couches : cellules internes ou basales, extrêmement aplaties (dont
les noyaux aplatis sont aussi visibles au-dessous de la base des cellules mucino-
gènes), et cellules externes cylindriques très hautes, un peu élargies au sommet,
avec des noyaux ovoïdes au centre.

Nous avons dit qu’au-dessous de l’épithélium, dans la paroi de l’œsophage
se trouvent deux couches de tissu conjonctif fibrillaire. La couche externe est
limitée à la périphérie par une mince couche pigmentaire, formée de cellules
pigmentaires profondément noires, très allongées. En dehors de cette couche
pigmentaire on voit une couche très lâche de tissu conjonctif fibrillaire, dans
laquelle 1] y a des fibres musculaires striées, isolées, qui courent circulairement
et en même temps obliquement. C'est pourquoi sur les coupes transversales
on trouve seulement des fibres circulaires très courtes.

Ces fibres circulaires se trouvent à la périphérie de la couche pigmentaire,
tandis que plus au centre, mais seulement du côté droit (là où la paroi œsophagienne
s'unit à l’aide de tissu conjonctif fibrillaire lâche avec le foie), on trouve aussi
des fibres circulaires longitudinales striées, isolées. Celles-ci sont mutuellement
séparées par des enveloppes pigmentaires, qui entourent les fibres et sont
formées de cellules très allongées, profondément noires, comme nous le voyons

sur la fig. 21, et sous un très fort grossissement aussi sur la fig. 5, PI. vu.

L'organe sous-æsophagien (glande thyroïde).

Nous avons dit qu’en dehors de la mince couche pigmentaire de l’œsophage
chez Siomias se trouve une couche lâche de tissu conjonctif fibrillaire, dans
laquelle plongent les fibres musculaires circulaires et qui est en connexion avec
le foie (fig. 22-24, PI. vo). |

Or cette couche de tissu fibrillaire lâche est fortement épaissie du côté
ventral de l’œsophage, là où se trouve un organe glandulaire très intéressant.
Cet organe est visible sur un assez grand nombre de coupes transversales
par l’œsophage, notamment par la partie plus postérieure de celui-ci, au niveau
où le foie est en connexion avec l’æœsophage.

L’organe possède dans sa partie antérieure une structure paire; ici il est
formé de deux accumulations de tubules glandulaires fermés, entourés par de
nombreux leucocytes, des cordons (trabécules) épithéliaux et de nombreux
capillaires. Ces deux masses, droite et gauche, sont complètement isolées l’une
de l’autre. Plus en arrière elles s'unissent en formant une masse impaire qui,
entourée par un tissu conjonctif fbrillaire est ici (c'est-à-dire dans sa partie
postérieure) isolée de la paroi œsophagienne (fig. 24 et 26, PI. vi).

Le plus souvent dans chaque masse on trouve sur les coupes transversales
2-4 tubules épithéliaux assez larges, comme le montrent les séries complètes
de coupes. Chaque tubule finit à ses deux extrémités en cul-de-sac; parfois
ces tubules se recourbent et forment de petites anses.

Sur la fig. 26, PI. vron voit, sous un grossissement plus fort, une partie
d'une coupe transversale par l'organe décrit; il y a ici quatre tubules coupés
transversalement. Chaque tubule est isolé de ses voisins par une couche de
tissu conjonctif lâche. Sa paroi est formée d’une couche d’épithélium cylindrique,
haut, comme on le voit sous un grossissement encore plus fort sur les
fig. 27 et.28, PL. vr.

Le protoplasme des cellules épithéliales montre une structure striée. Les
stries sont formées de rangées de corpuscules allongés, qui se colorent intensivement
par l'éosine et ont l'aspect de mitochondries (fig. 28, PI. vi). Le noyau est
ovoïde et situé un peu plus près du sommet cellulaire. Au sommet des cellules
on voit une bordure cuticulaire très délicate et des cils assez longs.

Le tubule est rempli par une sécrétion formée de granules très fins et de
vésicules. Ces sécrétions sont partout vers la périphérie abondamment collées
aux cils (fig. 28, PI. vo.

Autour de ces tubules épithéliaux on voit des accumulations de nombreux
lymphocytes, qui çà et là forment des amas plus grands, tandis que dans d’autres
endroits se trouvent de grandes accumulations de tissu épithélial sous forme
de cordons épithéliaux irréguliers, solides, entre lesquels comme aussi entre
les lymphocytes, se trouve un grand nombre de troncs sanguins et de capillaires.

Le plus souvent les leucocytes sont accumulés du côté ventral de l'organe,
tandis que les accumulations de cordons épithéliaux se trouvent du côté dorsal
(fig. 26, PI. vi]. Mais il y a des cas où les deux formations ne sont pas aussi
distinctement séparées l'une de l’autre.

Parmi les leucocytes on en trouve de deux sortes : 1° petits leucocytes avec
un protoplasme homogène et un grand noyau riche en chromatine ; 2° grands
leucocytes éosinophiles avec un noyau situé partout au pôle. Ce noyau possède
très souvent des formes différentes : ronde, en fer à cheval, en biscuit, bilobée
ou trilobée. Ces leucocytes sont très riches en protoplame rempli par des
granules très fins et éosinophiles.

A l'intérieur des vaisseaux sanguins entourés par les leucocytes, on voit aussi
en abondance deux sortes de ceux-ci (fig. 27, PI. vr).

Les « cordons épithéliaux » nommés plus haut sont formés d’accumulations
solides de cellules épithéliales, qui forment des trabécules, çà et là réunies les
unes avec les autres. Entre ces trabécules se trouvent en abondance les capillaires
sanguins.

Très souvent les trabécules montrent au centre une lumière remplie par un
capillaire sanguin. Dans d’autres cas les cellules épithéliales entourent de tous
côtés un capillaire sous forme d’une ou plusieurs couches de cellules hautes, étroites
à la base et élargies au sommet (fig. 29, PI. vr).

Le protoplasme de ces cellules épithéliales est très finement granuleux ; le
noyau se trouve au centre où plus près du sommet (élargi), ayant une forme ronde
ou ovoïde, très souvent bilobée.

Il est encore une question : quelle est la valeur morphologique et physio-
logique de l'organe décrit plus haut ?

La présence de tubules glandulaires tapissés par un épithélium cylindrique et
fermés de tous côtés, sans aucun conduit, l'abondance de capillaires autour de ces
tubules et la présence de cordons solides épithéliaux entourant les capillaires,
tout cela permet d'admettre presque avec certitude que nous avons ici à faire avec
une glande à sécrétion interne. Mais à quelles glandes, connues chez d’autres
poissons, répond notre organe sous-œsophagien ?

La présence de tubules glandulaires épithéliaux sans conduit et l'abondance
de la sécrétion, sorte de substance colloïdale remplissant leur lumière, laissent
admettre que cette glande répond, en partie au moins, à la glande thyroïde.

Cependant les relations topographiques parlent contre cette homologie. Chez
les sélaciens la glande thyroïde, impaire, est située au-dessous de la symphyse
mandibulaire, au point où le tronc artériel branchial se divise. Chez les téléostéens
la glande thyroïde, paire, est située à l'extrémité postérieure du premier arc
branchial (R. Wiedersheim). Ces relations topographiques ne répondent pas à
celles de l’organe décrit chez Siomias.

Mais les relations topographiques embryonnaires, par exemple chez l'Am-
mocoeles et chez d’autres vertébrés (où la glande thyroïde se développe comme
un produit de la paroi ventrale du pharynx embryonnaire, étant primitivement
située en avant du sac péricardial) répondent complètement à la topographie de
l'organe sous-Ͼsophagien chez Siomias.

Cependant si j'admets l’homologie de cet organe avec la glande thyroïde chez
d'autres vertébrés, je dois ajouter que cette homologie n’est pas complète, parce
que dans la glande sous-æsophagienne de Siomias on trouve non seulement les
tubules (follicules), qui répondraient aux follicules de la glande thyroïde typique,
mais aussi les cordons épithéliaux solides et les accumulations de leucocytes.

Nous pouvons donc conclure que la glande sous-œsophagienne chez Siomias
est un organe à sécrétion interne et répond en partie à la glande thyroïde des
autres vertébrés. |

Enfin il faut ajouter que cet organe chez Siomias est entouré par un tissu
conjonctif fibrillaire lâche qui, comme je l'ai déjà dit, passe directement au
même tissu de l’œsophage et renferme çà et là près de la périphérie de nombreuses
cellules pigmentaires noires (fig. 26, PI. vi.

L'estomac chez Siomias boa possède une structure très intéressante, en ce
que les glandes sont développées sur toute la longueur très grande du sac
stomacal. C’est pourquoi ces glandes sont isolées l’une de l’autre et situées à
distances réciproques assez grandes. Seulement en arrière, là où l'estomac finit en
cul-de-sac, elles sont plus ramassées, en formant ici les glandes du « fundus »,
tandis que les glandes de la partie antérieure et centrale sont des glandes
« pyloriques ».

Comme nous le voyons sur la fig. 25, PI. vr, dans la partie antérieure et
centrale de l'estomac la paroi est assez épaisse. On distingue ici une couche
épithéliale avec des glandes isolées et une couche de tissu conjonctif fibrillaire
sous-épithéliale, très épaisse, dans laquelle, comme dans celle de l’œsophage
on distingue aussi une couche interne un peu plus compacte et une externe
un peu plus lâche. Le tissu conjonctif et l’épithélium forment de nombreux
et épais plis longitudinaux. En dehors du tissu conjonctif se trouve une couche
très mince de cellules pigmentaires allongées, noires et à la périphérie de cette
couche on voit encore une couche musculaire, formée de fibres striées, isolées,
qui courent dans une direction circulaire et en même temps oblique. C’est
pourquoi sur les coupes transversales on ne voit pas de longues fibres circulaires,

mais des fibres très courtes qui outre cela s'entrelacent en partie. Seulement
dans le voisinage de l'endroit où commence l'intestin pylorique, on voit une
couche de fibres musculaires lisses circulaires. Comme nous le verrons plus bas,
dans la partie postérieure de l'estomac se trouvent aussi des fibres musculaires
lisses et notamment une couche interne circulaire et une couche externe
longitudinale.

L’épithélium stomacal montre plusieurs particularités histologiques dignes
d'intérêt. Tandis que chez d’autres poissons, disséqués par moi, l’épithélium
stomacal est partout haut, cylindrique, il montre chez Siomias une assez grande
Variation dans son aspect et notamment dans les parties antérieure et moyenne
de l'estomac (fig. 17-19, PI. vr). Ici il y a des régions, où l’épithélium est assez bas
ét où les longs axes des noyaux sont parallèles à la surface de l’épithélium.
Dans d’autres points l’épithélium est cubique ou cylindrique.

Un épithélum typique, haut, cylindrique est partout visible dans la partie
postérieure de l'estomac, là où se trouvent les glandes du « fundus ».

Il est encore digne d'intérêt que dans la partie antérieure et moyenne de
l'estomac les cellules épithéliales cylindriques montrent très souvent à la base
un, deux ou trois prolongements minces, qui s’enfoncent dans le tissu conjonctif
sous-épithélial (fig. 6, PI. vn), relations que je n'ai pas observées chez d’autres
poissons.

Dans chaque cellule épithéliale, indépendamment de sa forme, on distingue
une partie basale où le protoplasme est finement granuleux et un sommet qui
forme un «tampon » typique. Ces tampons montrent partout des striations
longitudinales très fines.

Les noyaux des cellules épithéliales sont ovoïdes et très caractéristiques,
parce que leur chromatine est le plus souvent accumulée principalement à la
périphérie et au centre, liée à un des pôles, en formant une sorte d’axe du noyau.
Ce pôle montre un petit enfoncement et c’est pourquoi le noyau semble être
bilobé à ce pôle, comme on le voit sur la fig. 6, PI. vn. Les nucléoles ne sont
pas visibles.

Comme je l'ai déjà dit, les glandes stomacales dans la partie antérieure
et moyenne de l'estomac sont isolées et situées à des distances assez grandes l’une
de l’autre. Le plus souvent elles possèdent la structure visible sur les fig. 5-9, PI. vr ;
notamment l’épithélium stomacal,sans modifier sa structure, forme un enfoncement,
au fond duquel s'ouvrent les deux conduits glandulaires dont l’épithélium se
compose de cellules cylindriques ou cubiques sans tampon au sommet. Chacun
de ces conduits s’amincit un peu vers la périphérie et se divise en deux canaux
qui passent à des parties glandulaires. Dans d’autres cas le conduit passe directement,
sans bifurcation, à une partie sécrétoire, qui à son tour se divise en deux tubules
glandulaires. Parfois, mais en général très rarement, un de ces derniers se divise
encore en deux tubules très courts. Généralement les tubules glandulaires sont
courts.

Très souvent on voit seulement un conduit glandulaire, qui s'ouvre au fond
de l’enfoncement épithélial et qui se prolonge en un tubule sécrétoire divisé
bientôt en deux courts tubules.

Les cellules sécrétoires sont cubiques ou un peu élargies à la base et amincies
au sommet.

Le protoplasme est très finement granuleux, ce qu'on voit bien sur les
préparations colorées par l’hématoxyline avec l’éosine, où ces fins granules
sont rougeâtres. Sur les préparations colorées par le liquide de Biondi-Heidenhain
(Biondi-Heidenhainische Dreifärbelôsung) on voit des granules plus gros, de
couleur cerise, mais seulement dans la partie périphérique de la cellule, autour
du noyau.

Les noyaux des cellules glandulaires sont assez grands, ronds ou ovoïdes,
situés à la base.

La cavité du tubule glandulaire est assez étroite.

Dans la partie postérieure de l’estomac, au voisinage de l'extrémité qui finit
en cul-de-sac, l’épithélium est haut, cylindrique, bien délimité du tissu conjonctif
sous-épithélial. L’épithélilum montre un nombre très grand d’enfoncements ;
au fond de ceux-ci s'ouvrent les conduits des glandes du « fundus ».

Dans chaque enfoncement s'ouvre un ou deux conduits, qui ordinairement
ne se divisent pas, mais passent directement à des parties tubulaires sécrétoires.
Ces dernières montrent le plus souvent une bifurcation en deux tubules géné-
ralement plus longs que dans les glandes pyloriques et formant des sinuosités.
C’est pourquoi sur les coupes transversales par la paroi stomacale on remarque
un nombre très grand de coupes par ces glandes dans toute l’épaisseur du tissu
conjonctif sous-épithélial, comme on le voit sur la fig. 5, Pl, vu. Entre ces
glandes il y a ici un nombre très grand de capillaires.

En dehors de la couche de tissu conjonctif on voit plusieurs couches de
cellules pigmentaires profondément noires, qui cà et là pénètrent aussi entre
les glandes mêmes.

En dehors des couches pigmentaires se trouve la musculature (lisse), qui
forme deux couches : une interne beaucoup plus épaisse, circulaire et une
externe, plus mince, longitudinale, très peu développée (fig. 5, PI. vi).

L'intestin pylorique. — Sa forme externe a été décrite plus haut. Dans toute
sa longueur il possède la même structure histologique. La muqueuse forme,
comme dans l'estomac, d’épais plis longitudinaux. L’épithélium a une structure
complètement identique à celle de lépithélium stomacal ; il est cubique ou
cylindrique, çà et là assez bas (comme dans les parties antérieure et moyenne
de l'estomac); chaque cellule est munie d’un tampon au sommet. Sous un
grossissement plus fort on voit que ces tampons ont une striation fine, longitudinale,
comme dans l’épithélium stomacal. Les noyaux aussi possèdent le même caractère
que dans celui-ci. Le tissu conjonctif fibrillaire sous-épithélial forme une

7

épaisse couche ; la couche musculaire est aussi assez épaisse et est formée de
fibres lisses circulaires.

Le foie et la vésicule biliaire. — La structure histologique du foie est la même
que chez Melamphaes et c'est pourquoi je ne donne pas la description de celle-ci
chez Siomias. : | .. |

Mais la vésicule biliaire, organe grand, on peut même dire gigantesque, qui
manque chez Melamphaes, montre chez Siomias plusieurs particularités très
intéressantes dans sa structure histologique.

On sait que généralement la paroi de la vésicule biliaire des vertébrés est
tapissé par un épithélium haut, cylindrique. Or chez Siomias boa on trouve au
contraire un épithélium très bas (fig. 3, PI. vn). Vu de la face interne il montre
des cellules polygonales, irrégulières. Sur les coupes on voit entre les cellules et
à la surface libre une pellicule homogène, qui se colore assez fortement par
l’éosine. Le protoplasme est alvéolaire ; les noyaux ovoïdes ou plus souvent
piriformes se trouvent directement au-dessous de la face interne libre des cellules
(üg. 3, PI. vu). S

En dehors de l’épithélium se trouve une couche de tissu conjonctif fibrillaire
avec des cellules fusiformes, très allongées. Dans la partie périphérique de ce tissu
on voit les fibres musculaires lisses, isolées, circulaires, en nombre restreint.

Dans le conduit de la vésicule biliaire (ductus cysticus) l’épithélium est cubique ;
la surface libre des cellules est munie d’une bordure mince, striée ; les noyaux
sont ronds et situés à la base. Le tissu conjonctif fibrillaire entourant l’épithélium
forme une couche plus épaisse que dans la vésicule biliaire même et renferme
aussi un petit nombre de fibres musculaires lisses, circulaires, séparées l’une de
l’autre (fig. 2, PI. vn).

Le conduit de la vésicule biliaire possède la même structure dans sa partie
initiale. Plus en arrière l’épithélium est haut, cylindrique, à noyaux allongés ; il
forme un certain nombre de plis longitudinaux bas. Cette partie du conduit, ainsi
que le conduit hépatique (ductus hepaticus) sont entourés par une couche commune
de tissu conjonctif fibrillaire.

Le conduit hépatique a la même structure que la partie postérieure du ductus
cysticus : l'épithélium est haut, cylindrique, avec des noyaux allongés au centre
des cellules; la surface libre de celles-ci est munie d’une bordure finement striée.
L’'épithélium forme un petit nombre de plis longitudinaux bas. En dehors de
l’épithélium, dans la couche commune de tissu conjonctif fibrillaire, on voit des
fibres musculaires isolées autour de l’épithélium du ductus cysticus ainsi qu'autour
de celui du ductus hepaticus ; dans celui-ci en nombre plus grand que dans
celui-là (g. 1, PI. vn).

Sur une série de coupes transversales on voit le point où ces deux conduits
s'unissent et forment un conduit unique, ductus choledochus, qui possède la

même structure que le ducius hepaticus.

Sr —

Dans l’épithélium du ductus cysticus, du ductus hepaticus et de l'intestin
pylorique on rencontre les parasites que nous avons décrits plus haut.

L'intestin moyen et l'intestin rectal ne présentent dans leur structure histo-
logique rien d’extraordinaire. La paroi intestinale est mince ; la relation d'épaisseur
de l’épithélium au reste de la paroi intestinale (couche de tissu conjonctif fibrillaire
et musculature) est comme 1.5 à 1. L’épithélium est formé de cellules hautes,
cylindriques, munies d’une bordure en brosse ; les cellules mucinogènes sont
munies d’une tige basale. Quant à la musculature, on distingue une couche cir-
culaire interne et une longitudinale externe (formée de faisceaux isolés), mais çà
et là il y a seulement la couche circulaire. Dans l'intestin rectal, dont la paroi est
un peu plus épaisse que celle de l'intestin moyen, on trouve partout les deux
couches musculaires (fig. 12, 13, PI. vn).

ie: 89

CHAPITRE TROISIÈME

Snereseeeroreenen

Ostéologie, Myologie, Organes respiratoires,
oystème nerveux, Organes génitaux et Remarques sur la position
systématique de Gasfrosiomus Bairdi Gill et Ryder.

Les premiers savants qui ont donné une description du squelette et de la
musculature du Gastrosiomus, sont Théodor Gill et John A. Ryder dans le
travail « On the Anatomy and Relations of the Eurypharyngidæ » (Proceeding
of United States National Museum vol. vi, n° 18. 1883).

I. Le crâne.

D'après les auteurs cités, le crâne du Gastrostomus « is really pentagonal,
but apparently, in the main, transversely quadrate, expanding backwards around
the foramen magnum (which is conspicuous from above) and forwards into the
ethmoid expansion, which is separated from the main portion by a strangulation ;
below it appears to have more of a pentagonal outline on account of the less
irregularity of the surface near the contour ». |

D'après ces auteurs la notocorde persiste dans le crâne jusqu’à la moitié de
la longueur du basioccipital.

Ils distinguent dans le crâne du Gastrosiomus les os suivants : 1° basioccipitale ;
2° supraoccipitale (« very small... developed as a transverse bone above the
foramen magnum and protruded forwards as a triangular edge between the
parietals »); 3° opisthooticum ; 4° prooticum (« a discoidal element... with which
alone hyomandibulare articulates...») ; 5° exoccipitale ; 6° alisphenoïdea ; 7° pterotica
(« external to the parietals... with lateral and ventral fossæ for the insertion of
the strong muscle which move the jaws »); 8° parasphenoïideum (« extends as a
narrow splint from the hinter portion of the basiooccipital to very near the end
of the rostrum »); 9° præsphenoidea ou alisphenoïidea ; 10° parietalia ; 11° post-
frontalia (« which form lateraly the posterior border of the orbit »); 12° ethmoideum
(« or rostral part of the cranium »). |

Quant au vomer, les auteurs disent : « There is no vomer developed, but
a triangular cartilaginous element pendent from the cranial rostrum affords

attachement for the palatine element anteriorly ».

ne

L’hyomandibulaire et spécialement le quadratum sont très allongés. L'extrémité
distale du quadratum forme avec « articular end of the mandible a complete
ginglymus joint ».

Les éléments squelettiques branchiaux sont «‘probably in large part carti-
laginous and imperfectly developed ».

C. Tate Regan donne un dessin du crâne de Gastrosiomus dans son travail
« The anatomy and classification of the teleostean Fishes of the Order Lyomeri »
(Annals and Magazine of Natural History, ser. 8, vol. x, september 1912).

Il distingue, entre autres, un « frontale » non mentionné. par Gill et Ryder,
un « sphenoticum » qui répond probablement au « postfrontale » de Gill et Ryder,
les « epiotica » non mentionnés par Gill et Ryder, qui répondent probablement
aux « opisiootica » de ces derniers auteurs.

E. Zugmayer a donné dans son grand ouvrage sur les poissons provenant des
campagnes du yacht PRINCESSE-ALICE (Rés. Camp. Scient. xxxv. Monaco 1911)
une description générale du crâne de Gastrostomus sans aucun détail. Plus tard
il en a donné dans son travail « Le crâne du Gastostromus Bairdi » (Bull. de l’Instit.
Océanogr. Monaco, n° 254, 1913) une description un peu plus détaillée.

D'après Zugmayer le crâne de Gastrostomus est formé par les os suivants :
1° nasal ; 2° ethmoïde {mesoethmoideum) ; 3° frontal antérieur {ethmoïdeum laterale) ;
4° frontal principal {froniale) ; 5° frontal postérieur fsphenoticum) ; 6° mastoïdien
{pteroticum) ; 7° pariétal ; 8° occipital supérieur (supraoccipitale) ; 9° occipital
latéral {exoccipitale) ; 10° occipital externe (epioticum) ; 11° basilaire (basiocci-
pitale) ; 12° vomer ; 13° sphénoïde {parasphenoideum) ; 14° aile du sphénoïde
(prooticum).

La terminologie de Zugmayer n’est pas partout correcte. Par exemple,
pourquoi nomme-t-il le « prooticum » aile du sphénoide ? Alisphenoideum est
un os tout à fait différent du « prooticum » !

Le suspenseur dirigé obliquement en arrière et en bas se compose, d’après
Zugmayer, de deux os, à savoir : le transversal (hyomandibulare) et le jugal
(quadratum), le transversal étant en outre articulé assez librement avec le mastoïdien ;
la mâchoire supérieure est mobile autant dans le sens de l'horizontale que dans le
sens de la verticale.

Les dessins donnés par Zugmayer (vues dorsale et ventrale du crâne) sont sché-
matiques. On peut donc dire que dans la littérature seulement les figures
(fig. 1 et 2, PI. vin) données par moi montrent les relations naturelles du
crâne de Gastrosiomus. De plus je trouve que les dessins de Zugmayer ne sont
pas complètement corrects en ce qui concerne les limites entre certains os du
crâne.

A ma disposition étaient deux crânes préparés par moi-même. Je les ai
nettoyés soigneusement, puis je les ai colorés un peu (un exemplaire par l’éosine,
le second par le paracarmin), mis dans l'alcool absolu et ensuite dans le xylol

pour les éclaircir le mieux possible. Par cette méthode j'ai obtenu des crânes
sur lesquels toutes les limites entre les os étaient très visibles et toutes les parties
cartilagineuses conservaient leurs formes naturelles. | |

La méthode décrite s’est montrée d'autant plus utile que dans le crâne éclairci
par le xylol le cerveau avec tous les nerfs, assez fortement colorés en rouge,
étaient très visibles quant à leur position naturelle dans le crâne. Ensuite j'ai
étudié aussi Îles crânes à l’état sec. Ce n'est qu'en comparant les préparations
sèches avec celles dans le xylol qu'on peut bien étudier tous les détails; si au
contraire on observe seulement le crâne sec, on peut facilement ne pas voir
les vraies limites entre les os et la forme naturelle des parties cartilagineuses.

Je possédais aussi (dans l’alcool) un exemplaire de crâne préparé par
M. Zugmayer. :

Sur ces trois exemplaires je pouvais bien distinguer toutes les parties du
squelette crânien et mes dessins sont faits par comparaison de ces trois crânes.

À la face dorsale du crâne seulement les partetalia se trouvent au plus haut
niveau; toutes les autres parties descendent un peu obliquement vers le côté
ventral et le plus bas situé est l'e’hmoideum, aussi le basioccipitale, comme nous
le voyons sur la photographie fig. 3, PI. vx (vue latérale du crâne).

À cette face crânienne on distingue les os suivants : 1° basioccipitale et,

latéralement, 2° occipitalia lateralia s. exoccipitalia. Ces trois os limitent le grand
trou postérieur, triangulaire, foramen magnum ; 3° partetalia, os grands, quadran-
gulaires, formant la plus grande partie de la voûte crânienne; à leur face
externe ils sont munis de deux crisiæ parietales transversales et de deux crisitæ
obliquæ qui s'unissent au point central de la face dorsale de l'os et servent à
l'insertion du musculus rectus capitis superior ; 4° frontalia, dont chacun est
formé de deux parties : a, postérieure, plus large, lamelliforme, qui s'étend
obliquement du côté supérieur et postérieur vers le côté inférieur et antérieur ;
b, antérieure, plus étroite, triangulaire, aussi lamelliforme, qui a une position
presque horizontale et est fortement réunie avec l’ethmoidale ; 5° ethmoïdale ou
ethmoidale mediale, os impair, triangulaire, lamelliforme, très mince, situé en
avant des frontalia, fortement réuni avec le : 6° nasale ou partie rostrale du crâne,
fortement développée, cartilagineuse.

Latéralement, sur le côté dorsal du crâne, à droite et à gauche du nasale, on
voit deux lamelles représentant les parties antérieures et latérales des ethmoïdalia
lateralia (g. 1, 2, PI. vin, Æ. L.); 7° prootica, deux grands os dorso-latéraux,
nommés par Regan pierotica, par Zugmayer Mastoiden (pterotica), en forme
de cuillère, élargis en avant, beaucoup plus étroits en arrière, munis du côté
externe d'un enfoncement profond, fossa prootica; & sphenotica, nommés
par Zugmayer « frontal postérieur », ce qui n’est pas juste; ils forment des
coins entre les frontale, parietale et prooticum de chaque côté; 0° opisthootica,
os quadrangulaires (vus du côté dorsal), situés entre les parietale, occipitale

= NE

laterale et prooticum de chaque côté ; ces os avaient été nommés par Zugmayer
« occipital externe », sans raison, car à l’occipital externe répond en latin
exooccipitale, qui est le synonyme d'occipitale laterale.

Nous avons déjà dit plus haut que le foramen magnum, triangulaire avec
des angles arrondis, est limité par le basioccipitale et les occipitalia lateralia.
Mais les bords de ces derniers, au-dessus du foramen magnum, montrent un
épaississement indiqué par Gill et Ryder, de même que par Zugmayer, comme
supraoccipitale s. occipitale superius. Mais d’après mes recherches il n’y a pas
ici un os bien séparé, mais seulement un épaississement des bords des occipitalia
lateralia, peut être donc un supraoccipitale très réduit, intimement réuni avec
ceux-ci.

Vu du côté dorsal, le crâne montre deux paires de protubérances : une
antérieure et latérale, où le prooticum se réunit avec le sphenoñicum et une
postérieure et latérale, où l'opisthooticum se réunit avec le prooficum. |

Je dois encore ajouter qu’à la face dorsale du crâne, au point où vers la
ligne médiane les deux frontalia se réunissent avec les deux partetalia, se trouve
un enfoncement triangulaire, où la paroi crânienne est beaucoup plus mince
que dans d’autres parties de la voûte crânienne et c’est pourquoi il se déchire
ici facilement pendant la préparation. Dans différents exemplaires du crâne cet
enfoncement montre un degré de développement assez variable et c’est pourquoi
cette région crânienne est en général représentée par divers auteurs d’une
manière assez différente.

A la face ventrale du crâne je distingue les os suivants : 1° basioccipitale ;
2° occipitalia lateralia ; 3° basisphenoïideum, os pentagonal, situé en avant du
basioccipital, muni à sa face ventrale d’une crête longitudinale, qui est un peu
élargie en arrière, où elle se prolonge sans limite distincte vers l'extrémité
postérieure de l'os ; 4° alisphenoidea, grands os situés en avant du basisphénoide
et des occipitalia lateralia ; leurs extrémités antérieure et latérale sont renflées
et arrondies ; à leur face ventrale se trouve un enfoncement assez profond
pour la fixation des muscles; enfin on voit ici trois grands trous pour les
neryus trigeminus ; 5° orbitosphenoïdea, situés en avant (et un peu latéra-
lement) des alisphenoïidea ; ils limitent la cavité orbitaire du côté latéral
et en partie du côté dorsal. Vu de la face ventrale, cet os se présente sous
forme d’une pyramide, dont le sommet est dirigé en avant et en bas, la base
en arrière et en haut où 1l confine avec l’alisphénoïde. Zugmayer pense sans
raison que notre orbitosphénoïde constitue seulement une partie ventrale du
sphenoticum, parce qu'il n'avait remarqué aucune limite entre ces os. Mais
son dessin (vue ventrale du crâne) n’est pas correct ; l'os qu’il indique sur cette
figure par le numéro 6, montre une limite longitudinale, comme on le voit sur
notre fig. 1, Pl. vu, c’est-à-dire une limite entre une partie du sphenoticum (S)
formant une partie de la paroi orbitaire et de l’orbitosphénoïde, limite très

re ÉË a

visible sur un crâne soigneusement préparé; on peut aussi séparer ces deux
os complètement l’un de l’autre; 6° les grands ethmoïdalia lateralia présentent
un cartilage lamelliforme, élargi en avant, situé à la face ventrale du crâne,
limité en arrière par les alisphénoïdes ; ils forment aussi la paroi interne de la
cavité orbitaire. Zugmayer a nommé cet os « frontal antérieur », mais sans raison,
parce que le frontal n’est jamais situé à la face ventrale du crâne ; 7° avec les
ethmoidalia lateralia (à la face ventrale) s'unit fortement un os très mince,
lamelliforme, élargi en avant, très aigu en arrière; c'est le vomer, dont l’ex-
trémité postérieure est réunie avec la crête longitudinale du basisphénoïde.

Enfin on voit encore à la face ventrale du crâne les os déjà mentionnés
plus haut : prootica et opisthootica.

La cavité orbitaire est assez vaste et limitée par les os suivants : 1° efhmoidale
laterale ; 2° orbitosphenoideum ; 3° alisphenoideum (le bord postérieur) ; 4° svheno-
ticum.

L'enfoncement articulaire latéro-ventral du crâne /fossa articularis), où
s'articule l’hyomandibulare, est limité principalement par l'alisphenoideum et le
prooticum, en partie aussi par l’opisthooticum.

Enfin je dois faire remarquer qu’à la face ventrale du crâne on voit deux
paires de protubérances latérales : une antéro-ventrale et une postéro-ventrale et
que la partie postérieure, hémisphérique, renflée, du basioccipital, articulée avec
la première vertèbre, est munie d'un profond enfoncement ouvert en arrière et
rempli par le tissu de la corde dorsale.

Le suspenseur, dirigé en arrière et en bas, est formé de deux os, qui sont
l’'hyomandibulare et le quadratum. Ces os, comme aussi les mandibules et les
maxilles, sont énormément allongés, en forme de baguettes et servent à la
fixation des parois limitant la gigantesque cavité buccale.

L'hyomandibulaire est un os long, aplati latéralement, dont l'extrémité anté-
rieure (capitulum) de même un peu aplatie, à bords arrondis, s'articule avec
le crâne. Il est dirigé en arrière et en bas ; sur sa face latérale et un peu ventrale
on voit sur toute la longueur un profond sillon longitudinal. Un très court
ligament articulaire hyomandibulo-crânien s'étend entre le fond de l’enfoncement
articulaire et le capitulum de l’hyomandibulaire. Au-dessous du capitulum prend
naissance un second ligament hyomandibulo-crânien accessoire, fort, assez long,
qui s'attache au crâne à la protubérance latéro-ventrale postérieure.

L'extrémité postérieure (inférieure) de l'hyomandibulaire est arrondie et
forme le capitulum inferius de cet os. De celui-ci jusqu'au capitulum superius
du quadratum, très bien dévelopé, s'étend un fort ligamentum capsulare sacciforme :
les extrémités (capitula) de ces deux os sont situées assez librement dans la vaste
cavité capsulaire (comme on le voit sur la fig. ro, Pl. vm) et c'est pourquoi les
mouvements de ces deux os dans cette articulation sont très libres.

Le quadratum (fig. 10, À, fig. 6 À, fig. 8, qu, PI. vin) est presque deux fois aussi

long que l'hyomandibulaire, il a aussi la forme d'une baguette un peu aplatie et est
muni sur sa face ventrale d’un sillon assez profond, limité latéralement par les
parties lamelleuses très minces. Il s'étend dans la même direction que l'hyoman-
dibulaire et forme avec celui-ci une ligne droite. Le capitulum superius s'articule,
comme nous l'avons dit, très librement avec l’hyomandibulaire, L'extrémité
postérieure (inférieure) forme un capitulum posterius, qui s'articule avec le capitulum
de la mandibule.

Cette dernière articulation (quadrato-mandibulaire) est très complète ; le capi-
tulum arrondi du quadratum s'articule avec l’enfoncement correspondant (fossa arti-
cularis) du capitulum mandibulaire ; en un mot nous avons ici un beau ginglymus.

On distingue dans cette articulation un /ligamentum capsulare et trois
ligamenta accessoria : lig. quadrato-mandibulare posterius et deux ligamenta
quadrato-mandibularia lateralia, tous forts et courts. Le ligament quadrato-mandi-
bulaire latéral est bien visible sur la fig. 10, PI. vu.

La mandibule est aussi très longue, en forme de baguette un peu aplatie
latéralement ; le bord supérieur est muni de 2-3 rangées de dents extrêmement
petites. L'extrémité postérieure présente un capitulum avec un enfoncement
(fossa articularis), qui s'articule avec le capitulum du quadraitum et se prolonge
en arrière comme un processus posterior ressemblant à l’olecranon ulnae chez
l’homme ; il sert à la fixation d’un tendon du smnusculus depressor mandibulæ s.
mandibularis superior (fig. 10, L., PI. vm). :

Les deux mandibules se réunissent à l'extrémité antérieure, où se trouve
un crochet dirigé en bas. Les mandibules sont réunies par une large membrane
de la peau, qui forme la paroi ventrale de la cavité buccale.

Il est très intéressant de voir que chez un de mes exemplaires, qui restait
complètement intact, près de l'articulation quadrato-mandibulaire, se fixe au
bord de la mandibule un court repli de la peau, qui s'étend en haut et s'attache
au bord de la partie la plus postérieure de la maxille (fig. 8, PI. vu). Ces relations
sont intéressantes parce que Brauer et Zugmayer ne représentent sur leurs dessins
aucun pli de la peau entre les parties les plus postérieures des mandibules et
des maxilles. Sur les figures données par ces auteurs, ces deux os sont libres
jusqu’au point de leur articulation postérieure et la fente orale est ainsi latéralement
plus longue que chez l'exemplaire mentionné par moi. Je ne peux pas dire si ma
forme présente une variété spéciale, qui diffère par cette modification anatomique
des autres formes ou si les auteurs cités plus haut ne possédaient pas d'exemplaires
complètement intacts, chez lesquels ce repli de la peau était déchiré.

Les maxilles sont aussi très longues, en forme de baguettes minces, élastiques
(comme les mandibules), aplaties latéralement et munies au bord inférieur de
rangées de dents extrêmement petites et fines. A l'extrémité postérieure la maxille
se réunit à l'aide d’un très court mais fort ligament maxillo-mandibulaire avec la
mandibule, un peu en avant de l'articulation quadrato-mandibulaire.

8 N.

A l'extrémité antérieure des maxilles on voit leur fixation commune mobile à
l’aide d’un plat et large ligamentum cranio-maxillare, qui s’élargit en avant et se
fixe au crâne à la face ventrale des ethmoidalia et du vomer. Ce large et fort
ligamentum cranio-maxillare est visible sur l'os, fig. 8 et 9, PI. vu.

Ainsi nous voyons que le crâne du Gastrosiomus a une structure bien singulière
qui ne répond pas à celle des autres téléostéens.

Avant tout il est étonnant que chez le Gastrostomus il n'y ait aucune trace d'os
operculaires, que les maxilles soient réunies avec le crâne seulement à l’aide d’un
ligament (/. cranio-maxillare), que les hyomandibulare, quadratum, mandibula et
maxilla soient extrêmement allongés et que dans le crâne manquent plusieurs os,
caractéristiques pour les crânes des autres téléostéens, par exemple les os ptéry-
goïdiens (metapterygoideum, entopterygoideum, ectopterygoideum, palatinum, paras-
phenoïdeum, intermaxillare, articulare, dentale, angulare, etc.) quant aux cartilages
des arcs branchiaux, ici très réduits, je les décrirai plus bas (voir les organes de la
respiration). |

II. La colonne vertébrale.

Les vertèbres dont le nombre, d'après Zugmayer, est 110, montrent des parti-
cularités anatomiques intéressantes. | :

Le corps (corpus vertebræ) est allongé, très fortement amphicœæle. Chaque
corps vertébral a la forme de deux cônes tronqués réunis par les sommets. La
corde dorsale, avec son elastica chordæ assez épaisse, est partout développée,
c'est-à-dire entre les vertèbres et dans les corps vertébraux ; seulement au centre
de ceux-ci, là où la paroi osseuse est plus épaisse, la corde est naturellement
plus mince. |

À la partie centrale du corps vertébral on voit une paire de neurapophyses
minces, courtes, cylindriques et vis-à-vis de celles-ci une paire d’hémapophyses
semblables, un peu plus longues. Cependant il est très curieux que dans la prépa-
ration * de la colonne vertébrale faite par Zugmayer je n’aie trouvé aucune
hémapophyse sur les 22 vertèbres antérieures, tandis que sur les suivantes
elles sont très bien développées. Zugmayer n’a pas bien observé ces relations ; sur
la fig. 3 d, pl. 1v de son ouvrage, Poissons provenant des campagnes du yacht
PRINCESSE-A LICE 1911 (Résultats d. C. Sc. Fasc. xxxv), qui représente la colonne
vertébrale du Gastrostomus, il a dessiné seulement les neurapophyses. Je ne sais
pas si Zugmayer, pendant la préparation de la colonne vertébrale, a arraché par
hasard les hémapophyses dans la partie antérieure de celle-ci, ou si ces apophyses
manquent ici vraiment, ce qui est possible, parce que généralement elles sont

Cette préparation {le crâne avec toute la colonne vertébrale) m'a été remise par M. le Dr Jules
Richard.

— 59 —

ici développées plus faiblement que plus en arrière. En outre chaque corps
vertébral est muni du côté ventral de deux lamelles ventro-latérales, dont
chacune est plus haute en avant et plus basse en arrière et mince ou complètement
réduite au centre. Dans la région postérieure du corps, où les hémapophyses
sont bien développées et les parties centrales des lamelles ne sont pas complè-
tement réduites, les re passent par ces lamelles, étant plus hautes que
celles-ci.

Gill et Ryder ont aussi observé les neurapophyses, mais ils n’avaient pas vu
les hémapophyses et ont pris les lamelles ventrales pour ces dernières. Ils disent :
« Haemapophyses are represented by parallel plates on ventral face of the centra,
and these plates are broadest at the ends of the vertebrae ».

Zugmayer aussi nomme les « plaques triangulaires » hémapophyses.

I me semble que les plaques (lamelles) triangulaires et les processus centraux
nommés par moi hémapophyses doivent être considérés comme parties différenciées
des hémapophyses chez d’autres téléostéens.

Je peux confirmer complètement l'observation de Gill et Ryder, d’après
laquelle Ia première vertèbre est plus courte que les autres et « the caudal
vertebrae are simpler than those of the body and prebranchial region ; at the
extreme tip of the tail the are possibly no vertebrae differentiated. » |

Sur les coupes on voit que la paroi de la vertèbre est formé d’un tissu
osseux avec des cellules allongées. Dans Ia partie basale de chaque neura-
pophyse et hémapophyse se trouve une petite île de cartilage hyalin, dans lequel
les cellules sont situées parallèlement les unes aux autres et sont aplaties (fig. 12-14,
PI. vin). Le cartilage est enveloppé par une partie osseuse homogène.

_ Le tissu de la corde dorsale, comme en général chez les téléostéens, est
formé de grandes cellules fortement vacuolisées, polygonales. L’elastica chordæ
est homogène ; l’épithélium de la corde n'est pas visible chez les formes adultes.
Au centre du tissu de la corde il y a une cavité assez grande.

Dans la partie mince, filiforme, postérieure de la queue on ne voit pas
de vertèbres bien développées et séparées, mais une colonne vertébrale très
réduite, notamment dans cette région du corps se prolonge seulement un tubule
osseux continu à parois minces et élastiques, muni d’une cavité centrale, qui
constitue une prolongation de celle de la corde dorsale (fig. 13, PI. vn).

Les corps des vertèbres, là où elles sont bien développées et séparées, se
réunissent à l’aide d’un fort ligament intervertébral.

Les côtes manquent complètement, ce qui est aussi très caractéristique
pour l'organisation de Gastrostomus.

Les basalia interspinalia des rayons de la nageoiïire dorsale sont formés de
deux pièces, ce qui a été bien observé par Gill et Ryder : d’une pièce proximale
et d'une distale dont les extrémités articulaires renferment des noyaux cartila-
gineux. Les rayons mêmes ont une partie basale, articulaire, renflée, divisée en

= 00 —

deux moitiés : droite et gauche; cette partie basale s'articule avec la partie
non segmentée du rayon. | |

Je dois encore remarquér qu'il y a aussi des pièces cartilagineuses basales dans
la ligne ventrale médiane, qui répondent aux basalia de la nagéoire anale; de
plus, dans la partie finale de la queue, à son extrémité postérieure un peu fenflée,
on voit sur les coupes transversales un cartilage dorsal, aplati latéralement,
assez grand, complètement séparé de la colonne vertébrale réduite de cette région
et formant l'axe de cette partie finale, renflée, de la queue.

Zugmayer a bien observé ce renflement à la fin de la queue et il s'exprime
de la manière suivante (pag. 91, Résultats 1911): « A la fin de la queue se trouve
un organe oblong et comprimé d’environ la même longueur que le museau.
Il est noir sur son côté dorsal et il porté 8 papilles sphériques. Le côté ventral
est blanc. Au premier coup d'œil on le prendrait pour un organe photodotique,
mais l'étude microtomique montre que ce n’est pas le cas. Il ne s’agit pas d'une
enveloppe de pigment, mais toute la moitié dorsale de l'organe est pigmentée
intérieurement aussi. Dans l’intérieur de cet organe se trouve la dernière vertèbre
et les papilles sphériques ont chacune un nerf spinal. Du reste cet organe ne
contient que de la musculature et rien ne permet d'admettre qu'il s'agisse là
d’un organe photodotique ». |

Sur la fig. 13, PL. vur, je donne une coupe transversale par la partie la plus
postérieure de la queue, c'est-à-dire par l’organe décrit par Zugmayer. Nous
voyons ici qu'il est plus étroit dans sa partie ventrale blanche et plus élargi dans
sa partie dorsàle noire. On trouve ici un prolongement tubuleux de la colonne
vertébrale réduite (c. .), un cartilage central (c), des vaisseaux sanguins (veine
caudale, y), une musculature très réduite, à savoir des fibres musculaires longi-
tudinales, isolées au nombre de 6-7 de chaque côté et enfin l'accumulation de
pigment noir dans la région dorsale de l'organe. Le pigment pénètre aussi dans
les deux prolongements dorsaux, corniformes, qui répondent probablement aux
« papilles » dorsales mentionnées par Zugmayer.

Le canal dans lequel se trouve la moelle épinière est extrêmement vaste
et limité par les corps des vertèbres, les neurapophyses ét une membrane formée
d'un tissu conjonctif fibrillaire très compact, épaissie à la ligne médiane du
côté dorsal, où elle se réunit avec les cartilages des basalia interspinalia.

La moelle épinière se trouve au fond du canal et est entourée par une
membrane (dura mater) ; celle-ci se prolonge latéralement en deux lamelles, qui
se réunissent avec la membrane du canal. Au-dessous de la moelle, entre celle-ci
et la face dorsale des corps vertébraux, se trouve un tissu spécial réticulé
(fig. 14, PL vim).

Rs

IT. ZLa musculature

Musculature de la tête. — L'étude détaillée de la musculaturé dé la tête
chez Gastrostomus est très intéressante, car il est vraiment difficile de comprendre
comment un animal avec un crâne si petit, un suspenseur et une cavité buccale
si gigantesques peut mouvoir ses mandibules.

Nous distinguons les muscles du crâne suivants : 1° musculus récius cäpitis
superior, grande masse musculaire paire, qui s'attache à la face postérieure
dorsale du crâne, notamment aux os pariétaux et à l’enfoncémment profofid du
prooticum, s'étend en arrière au niveau des 3-4 premières vertèbres et se prolonge
ici en une aponévrose fortement réunie avec la membrane qui limite le Canal
dé la moelle épinière (fig. 8 m. r. c., fig. 11m. r. c., PL. vin); 2° nusculus transyersus
capitis (fig. 8, m.t., fig. 11 m.t., PL. vin), pair, triangulaire, qui s'attache en bas
par un fort mince tendon à la protubérance latéro-postérieure du crâne, directétfent
en arrière de l'articulation hyomandibulaire et s'étend transversalement vèrs
le côté dorsal du crâne, s’élargit en éventail et se prolonge en une membrane
téndineuse, qui couvre dorsalement le m. rectus capitis superior. Je pénse que
ce muscle relève en haut l'extrémité antérieure, articulaire, de l'os hyomandibulaire ;
3 musculus rectus capitis inferior, pair, long, faiblement développé, attäché
à la face ventrale du crâne dans l’enfoncement de l’alisphénoïde il s'étend en
arrière et se fixe à la face ventrale de quelques vertèbres antérieures et à leurs
hémapophyses.

Muscles du suspenseur. — 1° musculi adduciores hyomandibularis anterior et
posterior, deux paires de muscles courts, très forts, réunis ensemble (l’antérieur
avec le postérieur de chaque côté), attachés à la face ventrale du basisphénoïde,
et des alisphénoïdés, ils s'étendent en arrière et à l'extérieur en se fixant au
capitulum et à la partie supérieure de l’hyomandibulaire (fig. 7, M. À., PI. vin).
Ils fonctionnent comme muscles adducteurs. | |

2° musculus mandibularis superior s. depressor (extensor) mandibulæ (— in. tèm-
poralis superior, J. Nusbaum-Hilarowicez 1914), muscle long, pair (fig. 10 L., fig. 8
m. Î. s., PI vin) qui s'attache en avant par un fort tendon à la protubérance
postérieure latérale du crâne et à la fossa prootica. L'extrémité antérieure de
ce muscle est’ couverte par la partie inférieure du muscle transverse de la tête.
Le muscle s'étend en bas et en arrière, parallèlement au bord supériéur dé
l’'hyomandibulaire, un peu extérieurement à celui-ci. |

Au delà de larticulation quadrato-hyomandibulaire le muscle s'aminéit
fortement’ et se prolonge en un tendon très long, fort et dur, qui se fixe à la
capsule articulaire quadrato-mandibulaire et à l'extrémité la plus postérieure
de la mandibule, à savoir au processus postérior, qui ressemble à l’olécrañe (fig. 10
LL; PE vin).

ee

Ce muscle fonctionne ainsi comme un élevateur de l'articulation quadrato-
mandibulaire et en même temps comme un abaisseur de la mandibule. Il élève
cette articulation et abaisse en même temps la mandibule, donc il possède un rôle
très important en ouvrant la bouche.

Ce muscle important a été bien observé par Gill et Ryder, qui s’expriment
ainsi : « The mandible is extended by a powerful extensor muscle, lying behind
and external to the hyomandibular... Its origin is in the lateral cranial fossae, in
the pterotic, and its insertion into the angular portion of the mandibule, which
is turned upward and backward over the distal end of the quadrate, like the
olecranon of man. This muscle may be called the extensor of the mandibule, and
is practically placed posteriorly to the suspensor ».

3° m. mandibularis inferior s. levaior [flexor) mandibulae (m. temporalis on
J. Nusbaum-Hilarowicz 1914) muscle pair, très fort, long, beaucoup plus fort que
le précédent (fig. 8 m. #. 1, PI. vin). Il commence par trois têtes. L'une de celles-ci
s attache au crâne latéralement et en bas, directement en arrière de l'orbite, à la
protubérance ventrale antéro-latérale, à la face ventrale du crâne, à l’endroit
postorbitaire (alisphénoïde) et à la partie postérieure du basisphénoïde. Elle est
très forte et couvre du côté ventral les 777. adductores hyomandibularis.

La seconde tête s'attache à la face latérale concave de l'extrémité antérieure
de l'hyomandibulaire et par plusieurs minces tendons triangulaires au fond du
sillon ventral de l’hyomandibulaire. Au delà de l'articulation quadrato-hyoman-
dibulaire ces deux têtes sont déjà complètement réunies ensemble. La principale
masse musculaire s'étend en arrière et en bas; en même temps son bord ventral
devient tendineux. Cette masse s'étend parallèlement à l’'hyomandibulaire et au
quadratum, au bord inférieur de ces deux os. -

La troisième tête est longue, musculaire et s'attache sur toute sa longueur
au sillon du bord inférieur du quadratum (äg. 10 D, PI. vin) ; en arrière, près
de l’extrémité postérieure de celui-ci elle abandonne ce sillon. Cette tête s’unit
avec la principale masse musculaire et le tendon commun du muscle, court et
fort, se fixe au bord supérieur de la mandibule, entre l'insertion du ligament
max1illo-mandibulaire et l'articulation quadrato-mandibulaire.

Enfin nous voyons que du bord inférieur de la masse principale du muscle
mandibulaire inférieur, au delà de l'articulation quadrato-hyomandibulaire, se
sépare une petite masse musculaire, qui s'étend en arrière, où son mince tendon
et le ligament maxillo-mandibulaire se fixent à la mandibule (fig. 10 W. W,
PI. vin).

La position et l'insertion du muscle mandibulaire inférieur expliquent bien sa
fonction physiologique. Par sa contraction la mandibule s'élève énergiquement
en haut et vers la maxille ; ainsi il fonctionne comme l'antagoniste du muscle
mandibulaire supérieur. | |

Je pense que ce muscle important joue encore un second rôle accessoire.

LT —

Lorsqu'il se contracte, l’'hyomandibulaire et le quadratum se courbent l’un vers
l'autre dans l'articulation quadrato-hyomandibulaire et en même temps la maxille,
mince et élastique se courbe aussi un peu. Au contraire par la contraction du
muscle mandibulaire supérieur ces os se redressent. La faible courbure des
maxilles, en forme d'arc concave vers le côté ventral, en même temps que les
mandibules se soulèvent vers les maxilles, peut être utile au moment où le poisson
attrape la nourriture à l'aide de sa bouche gigantesque.

La musculature du tronc. — Cette musculature entre la tête et la limite
postérieure de la cavité buccale est formée de deux rangées musculaires : une
dorsale et une ventrale. Le nombre des muscles (myomères) de la rangée
dorsale répond au nombre des vertèbres ; au contraire celui des muscles ventraux
est double, c'est-à-dire que chaque masse musculaire métamérique se divise ici
en deux portions : antérieure et postérieure, qu’on peut facilement séparer l’une
de l’autre (fig. 8 d, v, fig. 10 d, y, PI. vin). |

Plus en arrière la musculature du tronc est un peu plus compliquée, quoique
en général elle soit faiblement développée, conformément au faible développement
du tronc entier.

On distingue une rangée de muscles dorsaux et une de muscles ventraux,
ceux-ci beaucoup plus grands que ceux-là, les uns et les autres situés, comme
chez d’autres poissons, un peu obliquement et c’est pourquoi on voit partout
sur les coupes transversales deux ou trois paires de masses musculaires, externes
et internes, qui se recouvrent. Ces relations sont très visibles sur la fig. 14, PI. vi.

Les muscles dorsaux (d) se présentent ici comme deux paires de masses
musculaires situées au-dessus du canal vertébral. Les muscles ventraux (v) sont
visibles comme trois paires de masses musculaires aplaties, placées des deux
côtés du canal vertébral et de la colonne vertébrale, limitant ainsi latéralement
la partie dorsale de la cavité du corps. Ces deux rangées musculaires, dorsale
et ventrale, peuvent être considérées comme appartenant en général à la muscu-
lature dorsale proprement dite du tronc, formée d’une rangée plus dorsale située
au-dessus de la colonne vertébrale et d'une rangée plus ventrale, qui limite
en partie la cavité du corps (cœlome).

La musculature yventrale proprement dite du tronc est très faiblement
développée, parce que les parois du corps, qui limitent la partie ventro-latérale
et ventrale de la cavité du corps, sont très minces, membraneuses. Sur les coupes
transversales on voit dans ces membranes plusieurs paires de faisceaux muscu-
laires longitudinaux, dont les plus dorsaux sont plus gros, les plus ventraux
amincis et formés d'un nombre très restreint de fibres musculaires. On voit
ces faisceaux sur la fig. 14 #1. »., PI. vur. |

Dans la partie centrale du corps les masses musculaires des deux côtés
de la colonne vertébrale sont séparées de celle-ci par des espaces lymphatiques
assez grands, limités par une membrane semblable à celle qui limite le canal
vertébral.

Au-dessous de ces espaces on voit une autre paire de formations semblables
limitées de même par des membranes de tissu conjonctif de même structure.
Dans ces espaces il y a de grands troncs nerveux. Plus en arrière ces espaces
lymphatiques deviennent de plus en plus étroits et enfin disparaissent complètement
de sorte que les troncs nerveux se trouvent dans les muscles mêmes.

Plus en arrière, dans la région de la queue, tous les espaces lymphatiques
latéraux disparaissent complètement et il persiste seulement un espace médian,
c'est-à-dire celui du canal vertébral.

IV. Les organes respiratoires du Gastrostomus Bairdi (Gill et Ryder).

Cette structure est très intéressante. Nous savons déjà que l'appareil oper-
culaire (l'opercule avec tous les os correspondants) manque ici complètement,
ce qui est en connexion intime avec la structure des organes respiratoires.

Les relations anatomiques de ces organes diffèrent beaucoup de celles qu'on
trouye chez les autres téléostéens.

Les fentes branchiales se trouvent ici en arrière, très loin de la limite posté-
rieure du crâne et présentent une paire de trous assez grands, ovales, sur le
côté ventral. Chaque trou conduit dans une vaste cavité branchiale. Les cavités
droite et gauche sont complètement isolées l’une de l'autre.

Chacune de ces cavités est formée de deux parties : une externe, plus étroite
et courte, sorte de vestibule à direction transversale et un peu oblique et une
interne, beaucoup plus vaste, à direction plus longitudinale, qui se trouve en
avant de la première. Dans cette partie principale on peut distinguer la paroi
ventrale plus antérieure et la dorsale plus postérieure. Du côté ventral de la partie
interne sont situées les branchies.

Ces dernières sont formées de cinq séries branchiales, situées transversalement
et un peu obliquement.

Chaque série branchiale contient plusieurs faisceaux de formations allongées,
digitiformes, que je nomme troncs principaux. Dans chaque faisceau se trouvent
ordinairement deux rangées de troncs principaux, mais çà et là leur nombre
est plus grand. On rencontre 3 où même 4 rangées de troncs dans un faisceau ;
dans la première série de branchies, c'est-à-dire dans la série la plus antérieure
on ne peut pas indiquer le nombre de rangées parce que chaque faisceau a ici
la forme d'un petit pinceau, où tous les troncs principaux prennent naissance
d'un seul point basal.

Chaque tronc principal est digitiforme, mais aussi aplati latéralement ; seu-
lement la région du sommet est cylindrique et un peu renflée à l'extrémité.
Le tronc forme une sorte d’'axe; des deux côtés latéraux et aplatis de celui-ci
se trouvent deux rangées, droite et gauche, de petits plis lamelliformes ou mieux
linguiformes (fig. 13, Pl. 1x), que je nomme « lamelles branchiales » (Kiemen-

hi 2
blätchen). Au sommet il n’y a pas de lamelles et dans la région basale du tronc
on voit sur ses coupes transversales 2-3 lamelles de chaque côté (fig. 20, PI. 1x).
Ainsi la région moyenne du tronc a l'aspect d’une plume : axe central avec
deux rangées de branches latérales (lamelles branchiales).

Sur les coupes transversales (fig. 20, 21, PE 1x) on voit bien que le tronc
principal est aplati latéralement, qu'au centre se trouve un axe cartilagineux
(visible dans la coupe longitudinale sur la fig. 19, Pl.rx) et que près des bords
courent deux vaisseaux sanguins principaux : un afférent et un eflérent.

Entre les cinq séries de faisceaux branchiaux c’est-à-dire entre les cinq
branchies, au fond de la cavité branchiale, se trouvent 5 (ou 6) fentes ovales
internes, qui conduisent de cette cavité au pharynx.

Ces fentes branchiales internes peuvent être désignées comme canaux, car
elles sont assez longues, à cause de la grande épaisseur de la paroi pharyngienne
dans cet endroit (fig. 13, PI. 1x).

La première fente branchiale interne se trouve en avant de la première série
de faisceaux branchiaux ; la seconde, entre la première série et la seconde ;
la troisième, entre la seconde série et la troisième ; la quatrième, entre la
troisième série et la quatrième ; la cinquième, entre la quatrième série et la
cinquième.

D'après Gill et Ryder il y a 6 fentes branchiales internes, tandis que chez
mon exemplaire jen ai trouvé seulement 5. Cependant j'ai observé un petit
épaississement de la muqueuse (fig. 13, à droite) derrière la cinquième série
branchiale, qui représente sans doute le rudiment de la sixième fente. Ce rudiment
chez les autres exemplaires est peut-être mieux développé et forme une vraie fente.

Sur la fig. 13, Pl. 1x, on voit en profil les cinq séries branchiales et les cinq
fentes branchiales internes ; de plus on voit ici que chaque fente est entourée
par un anneau épaissi de la muqueuse, ce qui est causé par un fort muscle
circulaire (sphincter) situé au-dessous de la muqueuse.

La fig. 17, PI. rx représente une microphotographie des cinq séries branchiales
(de même en profil et un peu en face) et sur la fig. 16, PI. ix on voit une
microphotographie de la cavité branchiale droite entière, ouverte par l'écartement
de la peau. On y voit aussi la fente branchiale externe, la partie externe étroite
de la cavité branchiale, Îa se interne vaste de cette cavité avec les séries
de faisceaux branchiaux. |

La fig. 17, PI. 1x représente une microphotographie d'une coupe transversale
et un peu oblique par la moitié gauche du corps, au niveau d’une des fentes
branchiales internes, canaliformes ; au commencement de ce canal on remarque
une masse musculaire circulaire, le sphincter. Nous voyons ici que la paroi
externe de la cavité branchiale est assez mince, qu’elle contient des couches de
pigment noir (comme la paroi membraneuse de la cavité buccale) sous l'épithélium
externe et interne et un petit nombre de fibres musculaires isolées. Enfin nous

9= NN;

Se

voyons ici que la paroi dorsale de la cavité branchiale est aussi assez mince et
sépare cette cavité d’un diverticule pharyngien, que nous décrirons plus loin.

Entre les fentes branchiales internes, au-dessous de la muqueuse, se trouvent
quatre arcs branchiaux fortement réduits, formés de plusieurs (3-4) petites pièces
allongées, irrégulières, cartilagineuses ; les arcs sont librement plongés dans
un tissu conjonctif fibrillaire. Les axes cartilagineux (fig 18, PI. x) des troncs
branchiaux principaux sont complètement séparés de ces arcs réduits par une
couche assez épaisse de tissu conjonctif fibrillaire.

Ainsi dans la morphologie des organes respiratoires chez Gastr ostomus les
relations sont bien singulières, on ne les trouve pas chez les autres téléostéens.

Quant à la structure histologique des organes branchiaux, elle est de même
en plusieurs points très intéressante.

L'épithélium de la cavité branchiale a la structure de celui de la peau :
plusieurs couches de cellules, dont les basales sont plus hautes que les superficielles,
deux sortes de glandes unicellulaires : cellules mucinogènes (Becherzellen) et
cellules séreuses (Kolbenzellen).

L'épithélium des troncs principaux des branchies est formé d'une couche
unique de cellules aplaties, sans aucune cellule glandulaire. Au-dessous de
l'épithélium des troncs principaux se trouve un tissu conjonctif fibrillaire très
lâche, qui entoure l’axe cartilagineux et les vaisseaux sanguins.

Les lamelles branchiales montrent des particularités de structure intéressantes.

Les belles recherches de Biétrix, Giacomini, Marie Plehn, Faussek, Oppel
et d’autres auteurs ont démontré que la lamelle branchiale des téléostéens est
formée : 1° d’une couche externe épithéliale très aplatie ; 2° d’une « membrane
sous-épithéliale » présentant une couche plasmatique (syncytium) avec des noyaux
dispersés çà et là (par exemple chez Scorpaena porcus d'après Oppel) ou une
couche plasmatique sans noyaux; dans certains cas cette « membrane » est
complètement réduite (par exemple chez Zeus faber d’après Oppel) et 3 de
capillaires sanguins, qui ne sont pas limités par un endothélium ordinaire, mais
forment des fentes étroites, séparées l’une de l’autre par des rangées de cellules
hautes, prismatiques (Pilasterzellen des auteurs allemands), limitant la lumière
de ces capillaires.

En général j'ai trouvé les mêmes relations chez Gastrostomus. Ici on voit
(fig. 14, PI. 1x) de belles cellules sous forme de colonnes (Pilasterzellen), entre
lesquelles coule le sang des capillaires. Chacune de ces cellules placées en rangées
parallèles forme une sorte de colonne, dont la partie centrale plus mince renferme
le noyau et dont la base et le sommet, plus élargis, se prolongent des deux
côtés en fines membranes très minces, unies avec les membranes .semblables
des rangées voisines. Il se forme ainsi des canaux étroits entre les rangées de
cellules, limités par celles-ci et par les membranes, qui forment des prolongations
directes des cellules. Ces relations sont très visibles sur la fig. 14, Pl.1x. En divers

—
points des lamelles branchiales les « Pilasterzellen » ont une hauteur différente
et leurs noyaux sont souvent lobés. |

Tandis que chez les autres téléostéens les lamelles branchiales sont munies
d'une couche d'épithélium externe aplati et d'une « membrane » sous-épithéliale,
généralement mince ou complètement réduite, chez Gastrostomus au contraire on

»

voit sous l’épithélium externe aplati une couche épaisse de cellules cubiques,grandes,
riches en protoplasme. Ces cellules, très souvent arrondies, forment une couche
ininterrompue ou sont situées assez librement l'une auprès de l'autre. Leur pro-
toplasme est éosinophile et finement granuleux, quoique souvent il montre une
structure finement alvéolaire ; les noyaux sont ronds, riches en chromatine et situés
au centre. Entre ces cellules, ayant l'aspect de cellules glandulaires, on voit çà et
là des cellules beaucoup plus petites, allongées, appartenant au tissu conjonctif.
Les mêmes cellules sont aussi çà et là visibles entre l’épithélium externe et la couche
des grandes cellules cubiques.

Ainsi nous voyons que contrairement à tous les autres poissons, chez lesquels
la grande finesse de la membrane sous-épithéliale facilite l'échange des gaz, chez
Gastrostomus et certains autres poissons de grande profondeur la couche épaisse
d’épithélium cubique, au-dessous duquel se trouvent les capillaires, rend plus
difficile cette fonction.

Comment devons-nous expliquer physiologiquement ces relations histologiques ?

Je pense qu’à une grande profondeur les conditions de la respiration sont
aifférentes de celles qui règnent plus près de la surface de la mer. La quantité d’air
dissous dans l’eau est là très probablement assez restreinte. G. Schott * s'exprime
sur ce sujet : « Im Allgemeinen nimmt der absolute Luftgehalt mit der Tiefe ab;
Oberflächenwasser ist caeteris paribus etwas sauerstoffreicher als Tiefenwasser,
denn in der Tiefe ist der von den Meerestieren verbrauchte Sauerstoff direkt nicht
erzetzbar und er erklärt ausserdem durch die Oxydation faulender organischer
Stoffe noch weitere Verminderung ». Buchanan * a trouvé que dans la profondeur
de o jusqu’à 25 brasses l’air contient de 33.4 °/, jusqu à 37.7 °/, d'oxygène; dans la
profondeur de 400-800 brasses il y en a 15.5-22.6 °/, ; de 800 brasses jusqu'au fond la
quantité d'oxygène croît un peu, mais ne dépasse pas 23.5 °/,.

Mais non seulement la quantité d’air dissous dans l’eau est plus faible dans
les grandes profondeurs, mais les conditions de la pression externe diffèrent
beaucoup de celles de la surface et tout cela doit changer la fonction respiratoire.

Donc je pense que la présence d’une couche spéciale de cellules de nature
glandulaire, mentionnée plus haut, joue un certain rôle dans l'échange des gaz.
Peut-être le protoplasme de ces cellules comprime jusqu’à un certain degré l'acide
carbonique avant de le sécréter ou peut-être ces cellules possèdent vraiment une

à G. Schott, Physische Meereskunde. Leipzig 1903.
? D'après W. Marschall, Tiefsee und ihr Leben. 1888.

se

fonction sécrétoire, malgré ce que dit Hans Winterstein sur la fonction respiratoire
des vertébrés : « Nirgends ergibt sich ein morphologischer Anhaltspunkt für eine
sekretorische Tätigkeit, nirgends zeigt das respiratorische Epithel die charak-
teristischen Eigenschaften secernierender Zellen. » Et plus loin il ajoute : « Es ist
keinerlei Veranlassung mehr gegeben für die Erhaltung des Gasaustausches
(pendant la respiration) nach anderen Kräften zu suchen als der rein physikalischen
der Diffusion ‘. » Mais de l’autre côté nous savons que la sécrétion du gaz a été
constatée en beaucoup de cas chez les animaux inférieurs, par exemple chez les
protozoaires, siphonophores, certains annélides (dans les organes qui fonctionnent
comme vessie natatoire), chez les céphalopodes (dans les chambres aériennes), chez
les larves des Insectes vivant sous l'eau (dans le système trachéen fermé) et surtout
chez les poissons dans la vessie natatoire fermée (glandes spéciales).

La glande thyroïde est en certaine connexion anatomique avec les organes
respiratoires, car elle est située dans un épaississement spécial du tissu conjonctif
de la paroi d’un diverticulum pharyngien, qui se trouve au-dessous et en arrière de
la cavité branchiale. Ce diverticulum est séparé de celle-ci par une paroi très mince
(paroi dorsale de la cavité branchiale) mentionnée plus haut.

La glande thyroïde est assez bien développée quoique ce ne soit pas un organe
limité et isolé, parce qu'elle est formée d'un certain nombre de vésicules allongées
ou arrondies, placées librement et indépendamment l’une de l’autre dans le tissu
conjonctif mentionné plus haut. Les parois de ces vésicules sont formées d'une
couche d’épithélium cylindrique avec les noyaux près de la base.

Dans la lumière de ces glandes se trouve une abondante accumulation d’une
substance colloïdale, homogène, réfringente. Les vésicules sont fermées, sans aucun
conduit, entourées par un tissu conjonctif fibrillaire lâche ; dans leur voisinage il
y a beaucoup de vaisseaux sanguins. |

Du côté ventral, où se trouvent les plus grands troncs sanguins, l’accumu-
lation des vésicules glandulaires est en partie entourée par une couche
commune de tissu conjonctif plus compacte, comme nous le voyons sur Ja
fe. ra; Plax. |

V. Le système nerveux de Gastrostomus.

Je n'ai pu étudier ce système d'une manière détaillée, parce que le matériel
nécessaire à ces études était insuffisant. Voici les faits que j'ai constatés.

Le cerveau, comme chez les autres téléostéens, est beaucoup plus petit que
la cavité crânienne et est isolé de celle-ci par une épaisse couche de tissu adipeux
et lymphoïde environnant. Les relations de grandeur du cerveau et du crâne

* Handbuch der vergleichenden Physiologie, herausgegeben von Hans Winterstein. 25 Lieferung, Bd.
I. Physiologie der Kôrpersäfte, der Atmung. 2e Hälfte. Jena. G. Fischer, p. 256 und 258. 19r2.

= Îg =

sont bien visibles sur la fig. 1, Pl.1ix, où on voit l’encéphale et les contours
crâniens. Le cerveau, comme en général chez les téléostéens, est formé de
cinq parties : 1° télencéphale ou les hémisphères; 2° diencéphale; 3° mésen-
céphale ; 4° métencéphale ou le cervelet et 5° myélencéphale. La grandeur, la
forme et la topographie de ces parties sont visibles sur les fig. 2 et 3, PI. 1x.
Sur la fig. 4, Pl.1ix on voit la photographie d'une coupe sagittale par le cerveau
tout entier.

Le télencéphale est relativement petit et formé de ganglions basilaires (ganglia
basalia), d'une cominissure antérieure et d’un pallium épithélial. Les lobes
olfactifs ont presque la même grandeur que les hémisphères.

Le diencéphale, aussi large que le télencéphale, est bien visible du côté
dorsal (il n'est pas couvert par le mésencéphale). La glande pinéale est faiblement
développée ; elle est épithéliale, vésiculiforme. Du côté ventral du diencéphale
on voit les minces fractus optici, le chiasma des nerfs optiques et les minces
nerfs optiques. |

Le mésencéphale est beaucoup plus large que les deux parties antérieures
du cerveau. Du côté ventral on voit au centre l’hypophyse avec le saccus vasculosus
et latéralement les « lobes inférieurs » assez faiblement développés.

Le métencéphale, fortement développé, couvre la partie antérieure du
myélencéphale et la partie antérieure de la fosse rhomboïdale de ce dernier.

Le myélencéphale est vaste; la large fosse rhomboïdale est ouverte du
côté dorsal (il existe ici, comme chez tous les vertébrés, une voûte épithéliale).

Le métencéphale est la plus large de toutes les parties cérébrales, tandis
que chez plusieurs autres téléostéens c’est le mésencéphale qui est le plus large.

Les fig. 6-11, PI. 1v, représentent des coupes transversales par différentes
parties du cerveau ; nous voyons ici les relations topographiques de la substance
grise (accumulations de cellules ganglionnaires) et de la substance blanche.

Sur la fig. 6 (coupe par le télencéphale) on voit les ganglions basilaires /corpora
striata, ganglia basalia), le recessus olfactorius à la base de la fente entre ces deux
ganglions, l'accumulation cellulaire corticale et basale, le pallium épithélial et
l’épendyme dans la fente mentionnée. |

Sur les fig. 7-8 (coupes par le mésencéphale) on voit le ventricule central
avec l’épendyme, l’accumulation de cellules ganglionnaires autour de ce ventricule
et particulièrement autour de la partie basale de ce ventricule, séparée dans cette
coupe de la large partie dorsale. Sur la fig. 8, qui représente une coupe plus posté-
rieure, on voit les lobes inférieurs (untere Lappen) avec l’amas cellulaire cortical
et l'hypophysis cerebri. |

La fig. 9 représente une coupe par la partie étroite du cerveau, qui se trouve
à la limite entre le mésencéphale et le métencéphale. On voit ici des masses
ganglionnaires centrales qui divisent le ventricule central en une partie supérieure
large et une inférieure, étroite; l'épendyme et les accumulations de cellules
à la base de ces masses ganglionnaires.

+. 90 —

Sur la fig. 10 (coupe par le métencéphale et le myélencéphale) on voit
aussi ces masses ganglionnaires avec l'accumulation cellulaire corticale et le
commencement de la fosse rhomboïdale avec son épendyme. Les grandes cellules
ganglionnaires sont visibles au-dessous de cette fosse.

Sur la fig. 11 (coupe par le myélencéphale plus en arrière) on voit la fosse
rhomboïdale avec l'épendyme, les grandes cellules ganglionnaires latéralement
au-dessous de celle-ci, les accumulations cellulaires corticales aux côtés médians
des deux moitiés du myélencéphale, où on distingue une couche externe et une
interne de la substance blanche, isolées l’une de l’autre par des accumulations
cellulaires aplaties.

Les relations des nerfs céphaliques sont assez simples et typiques.

On distingue les nerfs suivants : servus olfactorius et neryus oplicus, assez
minces ; de la partie antérieure et latérale du métencéphale commencent
n. oculomotorius et deux racines du ". trigeminus, qui s'unissent (dans la cavité
crânienne) en un grand ganglion Gasseri. De celui-ci prennent naissance cinq
fortes branches : trois antérieures, dont deux répondent sans doute aux ramus
ophthalmicus superficialis et ramus ophthalmicus profundus et deux postérieures :
ramus maxillaris et ramus mandibularis. Les ouvertures pour ces branches se
trouvent dans l'alisphénoïde. |

Plus loin en arrière commence une racine acustico-facialis, qui passe en
un ganglion (dans la cavité crânienne); de celui-ci prennent naissance : nerrus
acusticus et n. facialis; le trou pour ce dernier se trouve au côté latéral de
l'ouverture pour le ramus mandibularis trigemini, dans l’alisphénoïde.

Du myélencéphale prennent naissance deux longues racines, qui s'unissent
en un ganglion (dans la cavité crânienne); de celui-ci commencent les forts
troncs du groupe du ragus.

Je n'ai pu constater le nombre des nerfs cérébro-spinaux. Cependant 1l me
semble qu'à la limite entre le myélencéphale et la moelle épinière se trouve
une paire de nerfs. |

Comme je l’ai déjà mentionné la moelle épinière est relativement assez mince,
aplatie et directement entourée par une épaisse et forte enveloppe de tissu
conjonctif fibrillaire compact (dura mater). Le vaste espace entre cette enveloppe
et les parois du canal vertébral forme un sinus lymphatique. A l’aide de deux
lamelles latérales, qui constituent des prolongements directs de l'enveloppe
mentionnée, la moelle épinière se fixe aux parois ventrales du canal vertébral ;
l’espace entre la moelle et la paroi ventrale de ce canal est rempli par un tissu
adipeux et réticulaire (adénoïdo-lymphoïde), ce qu'on voit sur les fig. 14 et 17,
PI. vu.

VI. Organes génitaux de Gastrostomus Bairdi.

Tous les exemplaires (quatre) de ce poisson étudiés par moi étaient des
femelles. Gill et Ryder (L. c. pag. 269) avaient de même à leur disposition des
femelles et c’est pourquoi ils donnent seulement la description des organes
génitaux femelles. D'après ces auteurs, l'ovaire est développé en arrière du foie,
« on either side of the mesentery for half the length of the body cavity ».

Quant à la structure de l'ovaire, ces auteurs disent : « It is composed of
series of free slightly plicated lobes which depend into the abdominal cavity
on either side of the intestine. No peritoneal tunic embraces the ovarian organ
and there is no oviduct, the ova escaping from the body by way of a conspicuous
pore immediately behind the vent ». | |

Quant à la genèse des œufs les auteurs cités s'expriment ainsi : « The following
facts in regard to the genesis of the ova have been made out : the ova probably
drop from the naked ovigerous lamellae, as they rupture their follicles, into
the abdominal cavity. In our specimen the ova were found to be imimature,
but were probably within a couple of weeks of the mature state, judging from
their large size (0.0007 meter in diameter), so that the animal probably spawns
in the autumn. No very immature or very young ova were noticed in the ovarian
stroma, which would indicate that the spawning season was near at hand ».

Il est difficile de dire si ces considérations sont tout à fait justes ; elle me
semblent être probables. Chez les exemplaires disséqués par moi, les œufs
n'étaient pas mûrs non plus ; ils renfermaient encore très peu de vitellus et la
grandeur des ovaires était encore faible.

Mais je dois absolument nier l’opinion de ces auteurs d'après laquelle les
oviductes manquent chez Gastrostomus. Au contraire, même chez les individus
dont les œufs n'étaient pas encore tout à fait mûrs, j'ai trouvé les oviductes bien
développés. Ceux-ci commencent dès la partie la plus postérieure de chaque ovaire ;
ils sont étroits, courts et s'unissent en un conduit commun impair, qui s'ouvre
au dehors, entre l’anus et l’orifice externe de la vessie urinaire, comme on le voit
sur la fig. 3, PL. 1. |

Dans cette phase de développement les ovaires se présentent comme des corps
allongés et aplatis sous forme de rubans (fig. 3, PI. 1).

La paroi externe de l'ovaire est formé d’une couche extrêmement mince de
tissu conjonctif avec des vaisseaux sanguins assez nombreux et d’une couche très
aplatie d’épithélium interne. En dehors du tissu conjonctif on voit çà et là,
généralement en nombre très restreint, des noyaux aplatis, qui répondent à l'endo-
thélium externe réduit.

La paroi ovarienne forme de nombreux plis parallèles, ramifés quelquefois
en deux ou trois lamelles (fig. 3, PI. 1). Dans ces plis se trouvent les œufs, mis en

rangées plus ou moins régulières. Dans la région postérieure de l'ovaire la plus
épaisse on ne voit pas ces rangées régulières d'œufs, car ceux-ci forment ici des
accumulations arrondies (fig. 3, PI. n. De plus chaque œuf est encore enveloppé par
une couche d'épithélium folliculaire. Les œufs rangés et la forme lamelleuse de
l'ovaire sont bien visibles sur les coupes transversales, où on voit aussi la topo-
graphie des ovaires et leurs relations avec les organes environnants. Une telle coupe
se voit sur la fig. 2, PL. x.

Ici l'ovaire gauche est situé entre la paroi du corps et l'estomac; l'ovaire droit
entre la paroi du corps et l'estomac sur le côté dorsal, entre le foie, l'estomac et
l'intestin sur le côté ventral. La même figure représente bien les nombreux plis
ovariens et le groupement des œufs en rangées régulières. On y voit aussi que du
côté dorsal les deux ovaires sont séparés l'un de l’autre par le rein (ici impair) et
au-dessous de celui-ci par un mésentère, qui s'étend entre le rein et l'estomac sur
la ligne médiane et renferme un fort muscle longitudinal impair (m. fig. 2, PL x).
Ce mésentère envoie dorsalement vers les côtés droit et gauche des ligaments qui
s'étendent jusqu'à l'ovaire et peuvent être nommés mesoaria (ms. fig. 2, PI. x). La
lamelle interne du péritoine enveloppe les viscères tout entiers.

Nous avons mentionné déjà qu'en arrière l'ovaire devient plus gros. Les
coupes montrent que dans cet endroit la paroi même de l'ovaire s'épaissit à
cause d’un plus grand développement du tissu conjonctif. Les extrémités pos-
térieures des ovaires et notamment leurs parois, plus fortes ici, se prolongent en
conduits étroits, tapissés par une couche d'épithélium cubique ou cylindrique et
munis d’une couche assez épaisse, externe, de tissu conjonctif fibrillaire plus ou
moins lâche et riche en vaisseaux sanguins. |

Ces deux conduits représentent des oviductes unis en arrière en un canal
impair, commun, plus large, qui s'ouvre, comme je l'ai déjà dit, au dehors sur une
petite papille entre l’anus et l’orifice urinaire externe.

_ La paroi de ce conduit commun est assez forte chez les individus jeunes,
chez lesquels les œufs sont encore rangés régulièrement, comme le montrent les
coupes transversales par ce conduit (fig. 3, PI. x). Ici nous voyons une couche
d'épithélium cylindrique avec des noyaux allongés, situés près de la base et avec
une bordure plasmatique, qui se colore en rouge par le liquide de Van Gieson.
La couche de tissu conjonctif plus ou moins lâche est extrêmement épaisse,
riche en vaisseaux sanguins et renferme un certain nombre de cellules pigmentaires
noires, ramifiées.

Chez les individus plus âgés, par exemple chez un Gastrostomus d'une longueur
de 51 centimètres (Stn. 3028, 1910, profondeur 0-5100"), j'ai trouvé que les ovaires
étaient beaucoup plus grands, plus épais et montraient plusieurs lobes épaissis à la
périphérie, amincis à la base, comme on le voit sur la fig. 4, PI. x. Dans chaque
lobe les œufs forment encore des rangées plus ou moins régulières ou des groupes
arrondis. L'union des deux ovaires, droit et gauche, est ici beaucoup plus intime

en

qu'aux phases plus jeunes. Cette union s'opère à l’aide d'une membrane étroite,
formée de tissu conjonctif fibrillaire lâche. Un prolongement de cette membrane
forme un ligament, qui réunit les ovaires avec l'intestin.

Les deux oviductes, très courts, se réunissent en un canal commun, qui
s'ouvre au dehors par un orifice assez grand, en arrière de l'anus (fig. 4, PI. x).
Mais ce qui est curieux, c’est que la paroi de ce conduit commun devient à cette
phase très mince et le tissu conjonctif fibrillaire qui le forme devient de plus en
plus lâche. C’est pourquoi je pense qu'aux phases encore plus avancées, quand les
ovaires sont grands et renferment des œufs complètement mûrs, les parois
externes des ovaires deviennent encore plus minces. Enfin elles se déchirent
facilement, ainsi que les parois du conduit commun et les œufs pénètrent dans
la cavité du corps, d’où ils passent au dehors par un pore assez grand, qui répond
à l’orifice externe du conduit commun chez les individus plus jeunes.

Ainsi nous voyons qu'aux phases plus jeunes les oviductes sont bien développés
et que l'observation de Gill et Ryder d'après laquelle « there is no oviduct,
the ova escaping from the body by way of a conspicuous pore immediately behind
the vent » est juste seulement lorsqu'il s’agit des individus complètement mürs.

VII. Quelques remarques sur la position du Gastrostomus dans le système.

Nous avons vu que les relations de structure du Gastrostomus (squelette,
canal digestif, organes respiratoires, reins, organes génitaux) sont bien singulières.
Il nous reste encore à considérer la position de ce poisson dans le système.

L'organisation du Gasirostomus diffère beaucoup de celle des téléostéens
typiques en plusieurs points très importants : 1° l'absence d’opercule, d'os oper-
culaires ou même de rudiments de ces formations (chez les Murènides 1l y a
un opercule réduit, caché au-dessous de la peau) ; 2° l'absence de côtes et même
de rudiments de ces dernières ; 3° l’absence complète d'écailles et de toutes
formations homologues ; 4° un rein unique sans glomérules de Malpighi;
5° un squelette très réduit, par exemple les arcs branchiaux extrêmement réduits
et l'absence complète de plusieurs os importants du crâne (par exemple, pte-
rygoidea, parasphenoideum, intermaxillare etc.) ; 6° cavité buccale énorme.

A. Günther (Catalogue of the Fishes in the Collection of the British Mus.
London, vol. vur. 1870) met les « Saccopharyngina » parmi les Murænidæ, mais
ce n'est pas juste, car d'après Günther Îles caractères de cette famille sont Îles
suivants : « Sides of the upper jaw formed by the toothbearing maxillaries, the:
fore part by the intermaxillary, which is more or less coalescent with the vomer
and ethmoid….. Organs of reproduction without efferent ducts ». Mais chez
Gastrostomus manque l'intermaxillaire ; et les conduits efférents sexuels (au moins
chez la femelle) sont très bien développés chez les individus jeunes ; (entre le
Gasirostomus et le Saccopharynx existe une très proche parenté).

ro =

Les y aus

Gill et Ryder (1896 et 1883) ont proposé de créer un « ordre » spécial pour le
genre Gastrostomus et les formes voisines et ont nommé cet ordre « Lyomeri ».
C. P. Regan (1912) a accepté cet « ordre » en le divisant en deux familles : 1° Sacco-
pharyngidae avec l'espèce Saccopharynx ampullaceus Harwood, 1827 ; 2° Eury-
pharyngidae avec les genres : Eurypharynx Vaill. (1882), Gastrostomus Gill et
Ryder (1883) et Macropharynx Brauer (1902) (M. longicaudaius Brauer). Mais
Zugmayer (1911) a démontré que cette dernière forme n’est qu’une jeune forme de
Gastrostomus. ;

Gill, Ryder et Regan n'ont pas raison de considérer les « Lyomeri » comme un
« ordre » des téléostéens (order of the teleostean Fishes), parce que ceux-ci repré-
sentent eux-mêmes un « ordre » d’après la plupart des zoologistes. Je pense donc
qu'il faut ranger ces poissons, comme « ordre » spécial, parmi la seconde « sous
classe » des poissons (Pisces), c'est-à-dire parmi les « Teleostomi ». C. Grobben
(Claus-Grobben, Lehrbuch der Zoologie, 1910) caractérise les teleostomi comme
« Fische mit gewühnlich vier Paar kammfôrmigen, am Rande der Kiemenbogen
stehenden Kiemen, mit einer Kiemenspalte und mit Opercular-Apparat ». Je
propose, pour ma part, de caractériser la « sous-classe » T'eleostomi comme poissons
avec 4 (plus rarement 5) branchies au bord d’arcs branchiaux bien développés ou
réduits, avec l'appareil operculaire ou sans celui-ci. Ensuite je propose de diviser
cette « sous-classe » en deux groupes :

1° Teleostomi operculati, avec l'appareil operculaire, généralement avec des
côtes, des arcs branchiaux bien développés et un squelette complet.

2° Teleostomi anoperculati sans appareil operculaire, sans côtes, avec des arcs
branchiaux très réduits et un squelette incomplet.

Aux Operculati appartiennent les ordres : Dipnoi, Crossopterygti, Chondroga-
noïdea, Rhomboganoidea, Cycloganoidea, Teleostei. Aux Anoperculati appartient
un seul ordre : Saccopharyngina ou Lyomert avec les deux familles : 1° Sacco-
pharyngidae et 2° Eurypharyngidae (Eurypharynx Vaill., Gastrostomus Gill et
Ryder).

CHAPITRE QUATRIÈME

Le canal digestif de Cyema atrum, Gonostoma grande,

G. bathyphilum, G. elongatum.

I]. Le canal digestif chez Cyema atrum.

Cet appareil (fig. 11, Pl. mr) est formé d’un œsophage assez long, qui se prolonge
directement en un long estomac sacciforme, un peu aigu à son extrémité postérieure ;
d'un intestin pylorique formant une anse, où s'ouvrent les conduits hépatique et
pancréatique ; d’un intestin long et droit, dont la partie la plus postérieure est
ün peu -plus étroite que le reste et représente le réciim. Le--fore -est-petit,
arrondi, faiblement bilobé ; la vésicule biliaire est très petite, cachée au-dessous
du foie. |

La structure histologique du canal digestif est ici assez simple ; les paroïs de
celui-ci sont en général relativement minces et tendres. |

Dans la partie antérieure de l’æœsophage l’épithélium est formé de plusieurs
couches de cellules et contient deux sortes de glandes unicellulaires (mucinogènes,
sans tiges et séreuses, d’une forme ovoïde, comme dans la peau, ce qu’on voit sur
la fig. 7, PI. x). Au-dessous de l’épithélium se trouve une couche de tissu conjonctif
homogène, compact, sans cellules; à la face externe de cette couche homogène
aboutit une couche de cellules aplaties. Dans le tissu conjonctif fibrillaire lâche
sous-jacent on voit des fibres musculaires isolées, striées, longitudinales et en
dehors de celles-ci des fibres isolées, striées, circulaires, ce qu’on voit sur
la fig. 7, PL x (coloration par l’hématoxyline de Delafeld et le liquide de
Van Gieson).

Dans la partie postérieure de l'æsophage on trouve déjà une seule couche de
cellules épithéliales hautes, cylindriques avec des glandes unicellulaires mucinogènes
(Becherzellen).

L'estomac est muni d'une paroi en général assez mince. Du côté gauche (fig. 5,
PI. x) de la partie antérieure de l'estomac l'épaisseur de la couche de tissu
conjonctif et musculaire est seulement deux fois plus grande que l'épaisseur de la
couche épithéliale. Au contraire, du côté droit l'épaisseur de Ia paroi stomacale

es

est beaucoup plus grande. Dans la partie postérieure de l'estomac la paroi est
partout relativement très mince, comme on le voit sur la fig. 6, PL. x.

L’épithélium stomacal est haut, cylindrique ; chaque cellule est mume d'un
« tampon » très haut, de sorte que souvent le protoplasme avec le noyau occupe
seulement 1/3 de la hauteur cellulaire, tandis que le reste est occupé par le haut
tampon homogène.

Les glandes stomacales ne sont pas localisées dans un endroit déterminé,
comme chez la plupart des téléostéens ; mais elles sont dispersées dans l'estomac
tout entier, assez éloignées l’une de l’autre et très faiblement ramifiées. On y
voit un court conduit glandulaire et des tubules secrétoires ramifiés en deux
ou trois parties (fig. o, PL. x), une cavité interne étroite, tapissée par des cellules
cubiques ou pyramidales.

La musculature stomacale est lisse. Dans la partie antérieure de l'estomac,
plus large, il y a des faisceaux de fibres musculaires internes, assez faiblement
développées et une couche de fibres musculaires externes (fig. 9, PI. x).

Dans la partie postéricure de l'estomac on trouve seulement des fibres isolées
longitudinales en nombre très restreint (fig. 10, PI. x), correspondant à la minceur
de la paroi dans cette partie de l'estomac.

La paroi de l'intestin pylorique est assez épaisse, munie de plis longitudinaux
et bas (des plis semblables se trouvent aussi dans l’estomac); lPépithélium est
cylindrique, haut, avec les noyaux situés près de la base; les cellules sont munies
de tampons, comme dans l'estomac, mais les glandes manquent. Les faisceaux
de fibres musculaires longitudinales internes sont très faiblement développés,
tandis que la couche externe de fibres circulaires est beaucoup plus épaisse.

L'intestin moyen et rectal de Cyeima aïrum a une sructure extrêmement
délicate. La paroi intestinale est formée par une couche d’épithélium et par une
couche très réduite de tissu conjonctif fibrillaire, sous-épithéliale, presque sans
aucune trace de musculature.

Lorsqu'on regarde sous le microscope les coupes de cette paroi (6g. 8, PL. x),
il est difficile de croire que c'est là une paroi intestinale de vertébré, car on y
voit une couche épithéliale et au-dessous d'elle une couche extrêmement mince
de tissu conjonctif, sorte de membrane basilaire. Il y a des régions de la paroi
intestinale très grandes, où la musculature manque complètement ; dans d'autres
eadroits on voit seulement çà et là une fibre musculaire très réduite et extrêmement
mince. Cette mince couche de tissu conjonctif pénètre dans les plis longitudinaux
de la muqueuse, où elle est riche en vaisseaux sanguins.

IT. Le canal digesiif de Gonostoma grande /Collett),
Gonostoma bathyphilum /Vaïllant) et Gonostoma elongatum /Günther).

Le type général de la structure du canal digestif chez ces trois espèces du
genre Gonosioma est partout le même, quoiqu'il y ait aussi des différences de
nature plus quantitative que .

Le canal digestif de Gonostoma grande /Colleit).

L'œsophage passe graduellement, sans limite externe et avec le même
diamètre en un estomac sacciforme, allongé et aigu à son extrémité postérieure.
L'œsophage et l'estomac sont profondément noirs.

De la partie antérieure de l'estomac prend naissance l'intestin pylorique ou
duodénum, qui forme une anse et passe dans l'intestin moyen, droit, dont le
diamètre près de l'extrémité postérieure devient plus petit ; cette partie d'’intestin
forme un court rectum.

Dans l'intestin pylorique s'ouvrent quatre appendices pyloriques digitiformes.

Le foie est assez grand, triangulaire, faiblement bilobé ; la vésicule biliaire
est petite, arrondie, le canal cholédoque s'ouvre dans l'intestin pylorique, derrière
les appendices.

Le pancréas est formé d'un grand nombre de tubules glandulaires, qui
communiquent entre eux êt sont plongés avec les conduits dans un tissu conjonctif
réticulaire et adipeux. Celui-ci forme six ou sept cordons : deux longs cordons
aux côtés droit et gauche de l'intestin, un long cordon fixé à la paroi stomacale
et trois ou quatre courts cordons entre les appendices pyloriques. Tous ces cordons
se réunissent en un seul organe continu (fig. 7, PL. m).

Le canal digestif de Gonostoma bathyphilum /Vatllant).

L'œsophage et l'estomac sont tout à fait semblables à ceux de Gonostoma grande.
L'intestin pylorique (duodénum) commence à la partie la plus postérieure de
lPestomac et c'est pourquot 1l est beaucoup plus long que chez cette dernière
espèce, notamment la partie gauche de l’anse pylorique est beaucoup plus longue
que la droite. Le nombre des appendices pyloriques est de cinq ; leur disposition
est la même que chez Gonostoma grande. L'intestin moyen à la forme d'un S
et s’amincit très graduellement vers l'extrémité postérieure. Le foie est triangulaire,
non lobé, la vésicule biliaire est arrondie. La situation du pancréas ressemble
à celle vue chez Gonosloma grande, seulement les tubules pancréatiques forment
ici dans le tissu conjonctif des accumulations locales plus grandes que chez cette
espèce, sortes d'ilots ovoïdes dispersés dans ce tissu (fig. 8, PI. mn).

np

Le canal digestif de Gonostoma elongatum (Günther).

L'aspect général est le même que chez les deux autres espèces de Gonostoma,
mais 1l y a aussi plusieurs différences. Le foie est formé de deux grands lobes,
droit et gauche, réunis par une étroite partie médiane ; la vésicule biliaire est
ronde. L'intestin pylorique (duodénum) commence à la moitié de la longueur de
l’estomac. Au point où l’anse de l'intestin pylorique passe à l'intestin moyen on voit
un rétrécissement très distinct, où s'ouvrent : le conduit hépatique et cinq
appendices pyloriques, dont le premier se trouve en avant de l'intestin pylorique,
les quatre suivants en arrière de celui-ci. Le pancréas est situé dans les cordons de
tissu conjonctif, à savoir : deux longs cordons des deux côtés de l'intestin et cinq
cordons courts entre les appendices pyloriques et l'intestin pylorique. Tous ces
cordons s'unissent là où commence le conduit pancréatique principal (fig. o, PI. mm).

Quant à la structure du canal digestif chez Gonositoma, je décrirai seulement
les relations trouvées chez l'espèce Gonosioma grande, parce que les tissus de ce
canal étaient bien conservés seulement chez elle (liquide de Bouin, sublimé sa-
turé avec acide acétique), tandis que le canal digestif des deux autres espèces
provenait d'individus conservés dans l'alcool pour des buts systématiques, et non
anatomiques.

L'œsophage a la structure suivante : l'épithélium est formé de plusieurs couches
de cellules, dont les basales sont un peu plus hautes que les autres, arrondies ou
polygonales ; la couche superficielle est formée de cellules un peu aplaties. Dans
cet épithélium il y a un grand nombre de cellules glandulaires mucinogènes,
arrondies où un peu ovoïdes, avec un noyau aplati basal ; les cellules glandulaires
séreuses (« Kolbenzellen ») manquent ici. La plupart des cellules mucinogènes
sont fermées ; seulement çà et là on voit une cellule ouverte, située près de la
surface libre.

Au-dessous de l’épithélium on voit dans l'œsophage une couche de tissu
conjonctif fibrillaire très compact, d'aspect presque homogène, contenant un
nombre très petit de cellules; c’est le « stratum compactum » de l’œsophage,
décrit déjà par moi chez certains autres poissons. Au-dessous de cette mince
couche compacte on voit une couche beaucoup plus épaisse de tissu conjonctif
fibrillaire lâche ; la relation d'épaisseur de ces deux couches est environ comme
1 : 10. Dans la couche lâche plongent les fibres musculaires striées, isolées :
les internes sont longitudinales, plus minces, les externes plus épaisses, en partie
circulaires, en partie obliques, croisées (fig. 12, PI. x}. Dans le tissu fibrillaire
lâche on voit un grand nombre de cellules pigmentaires noires, fortement allongées,
en partie ramifées, accumulées principalement entre la couche compacte, les
muscles et en dehors des couches musculaires.

Dans la partie plus postérieure de l’œsophage la structure change; dans

=
l'épithélium décrit plus haut apparaissent des îlots d’épithélium cylindrique,
formé d'une seule couche de cellules, le « stratum compactum » perd graduellement
sa structure compacte et devient un peu plus lâche ; les faisceaux de fibrilles
dans ce stratum sont mieux visibles et le nombre des cellules croît. Les îlots
d'épithélium cylindrique grandissent à mesure qu’on s'approche vers l'extrémité
postérieure de l’œsophage et enfin dans la région la plus postérieure, qui passe
à l'estomac, on trouve déjà partout une seule couche de cellules épithéliales
cylindriques. Les îlots formés de plusieurs couches épithéliales passent directement
en îlots formés d’une seule couche (fig. 13, PI. x). Près de la limite entre ces
deux sortes d'épithélium on voit que dans lépithélium à plusieurs couches
cellulaires le nombre des glandes (cellules) mucinogènes croît; de plus ces glandes
changent ici de forme, c’est-à-dire ne sont plus arrondies et sans tige, mais
ovoïdes et pédonculées. Au-dessous de la partie basale qui renferme le noyau
une telle glande se prolonge en une tige très mince et assez longue. Une autre
différence dans l’épithélium à plusieurs couches, dans le voisinage de la limite
citée, consiste en ce que les cellules de la couche basale deviennent très hautes :
leurs parties basales sont en général plus élargies et forment souvent plusieurs
prolongements, sorte de courts pseudopodes. Ces relations permettent d'affirmer
que la couche des cellules basales, hautes, cylindriques dans les îlots où l'épithélium
forme seulement une couche unique, est homologue de la couche basale de
l'épithélium environnant, formé de plusieurs couches. Mais ces deux couches
homologues diffèrent beaucoup par leur aspect : les cellules de la couche basale
sont ordinairement élargies à la base et le protoplasme est ici plus condensé
dans sa partie périphérique; au contraire dans l'épithélium des îlots où il y a
seulement une seule couche de cellules, les parties basales de celles-ci sont beaucoup
plus étroites que leurs sommets et le protoplasme ne montre pas la condensation
susnommée. Dans cet épithélium 1l y a aussi des cellules mucinogènes ouvertes
et munies d'une tige basale.

Enfin on remarque que les cellules épithéliales de la région œsophagienne
plus postérieure, où elles forment une couche unique, sont munies de minces
bordures homogènes (fig. 13, PI. x), qui deviennent plus épaisses, c’est-à-dire
plus hautes dans les cellules de l'extrémité la plus postérieure de l’œsophage
et passent graduellement aux « tampons » des cellules stomacales.

Dans l'estomac de Gonostoma grande on distingue deux parties : une antérieure
qui forme la région de passage entre l'œsophage et l'estomac et une postérieure
ou estomac proprement dit; la relation de longueur de ces deux parties est
comme 1:4. Dans la première partie l’épithélium ne renferme pas de glandes
stomacales, mais les cellules sont ici déjà munies des « tampons » si caractéristiques
pour l'épithélium stomacal. Le passage de la musculature œsophagienne à la
stomacale proprement dite est graduel.

Dans l'estomac proprement dit il y a partout des glandes stomacales ;: dans

— —

la région pylorique, ainsi que dans la partie la plus postérieure /fundus) elles
montrent le même type, de sorte qu'on ne peut pas distinguer ici les glandes
pyloriques de celles du « fundus ».

Les relations de structure histologique de la paroi stomacale, au niveau où
prend naissance l'intestin pylorique, sont visibles sur la fig. 14, PL. x, qui représente
la partie gauche d'une coupe transversale. Ici nous voyons au-dessous de la couche
épithéliale une couche spéciale de tissu conjonctif fibrillaire très compacte, qui
se colore intensivement en rouge par le liquide de Van Gieson ou en brun par
l'hématoxyline de Krüger. Dans cette couche on voit un assez grand nombre
d'interruptions, qui correspondent aux points où se trouvent les conduits de
glandes stomacales. En général sur les coupes on voit qu’au voisinage direct
de chaque interruption cette couche forme un épaississement annulaire, qui
l'entoure, ce que nous verrons encore plus bas. Cette couche compacte émet
des prolongements vers la périphérie, qui pénètrent entre les groupes de glandes,
les entourent en les isolant des groupes voisins.

En dehors de la couche compacte se trouve une couche de tissu fibrillaire
lâche, beaucoup plus épaisse que la première ; elle se trouve sous la couche des
glandes stomacales, entre lesquelles le tissu conjonctif est formé principalement
par les prolongements mentionnés de la couche compacte.

Les deux couches, compacte et lâche, de tissu conjonctif renferment un grand
nombre de cellules pigmentaires, noires, allongées et rangées parallèlement ;
elles forment sous la couche glandulaire une accumulation pigmentaire assez forte.

Dans la couche interne, compacte, de tissu conjonctif fibrillaire on voit
beaucous de fibres musculaires lisses, très délicates, longitudinales (Ag. 14, PI. x),
qu'on peut nommer muscularis Mmucosae.

La musculature (ruscularis) de la paroi stomacale est formée de deux couches
principales : d’une interne circulaire et d’une externe longitudinale de fibres lisses
(Hg. 15, PL. x); cette dernière couche est continue ou forme des faisceaux isolés
les uns des autres (sur les coupes transversales).

Dans la région la plus antérieure de l'estomac, dans la partie où commence
l'intestin pylorique et un peu plus en arrière, mais seulement du côté gauche de
l'estomac, pénètre entre les deux couches de fibres musculaires lisses une très
épaisse couche de fibres musculaires striées, assez isolées mutuellement. Cette
couche constitue un prolongement de la musculature œsophagienne et est formée
de fibres en partie circulaires, en partie longitudinales (fig. 15, PI. x). Sur cette
figure on voit aussi que la couche musculaire mentionnée pénètre de même en
partie dans la musculature lisse circulaire. Ces relations sont visibles sur la fig. 14
qui représente la moitié gauche d’une coupe horizontale par l'estomac dans la
région pylorique; sur la même coupe, du côté droit de la préparation, cette
couche de la musculature striée n'est déjà plus visible, on voit seulement les deux
couches lisses.

L'épithélium stomacal est très haut ; les cellules sont élargies au sommet où se
trouve le tampon très pâle et délicat et amincies à la base. Entre les cellules épi-
théliales on voit un grand nombre de leucocytes.

Quant aux glandes stomacales, comme je l'ai déjà mentionné, elles sont
accumulées en groupes. À chaque groupe glandulaire correspond un enfoncement
cylindrique de l’épithélium stomacal. Cet enfoncement se trouve au niveau de la
couche épithéliale même (fig. 14, 15, PL. x) et n’est pas formé par une invagination
de la couche épithéliale tout entière, mais de la façon suivante : j'ai déjà dit
qu'autour de l’enfoncement épithélial le tissu conjonctif sous-épithélial forme un
épaississement circulaire, compact (e, 4, c, fig. 15, PI. x), les cellules épithéliales
sur celui-ci sont extraordinairement hautes ; leurs parties basales sont très étroites,
rigides, rapprochées l’une de l’autre et forment ainsi sans doute une sorte de soutien
pour -épithélium environnant. Dans l’enfoncement même les cellules prennent
une position de plus en plus horizontale, au lieu de la position verticale à la
surface de la paroi stomacale et deviennent en même temps plus basses, ce qu’on
voit en coupe sur la fig. 15, PI. x.

L'enfoncement épithélial se prolonge directement en un court conduit glan-
dulaire (cou, « Hals »), formé de cellules cubiques, un peu aplaties. Le conduit
se trouve entièrement en dedans de la couche de tissu conjonctif sous-épithélial.

Dans chaque enfoncement épithélial s'ouvrent 3-4 ou plus rarement 5-6 courts
conduits glandulaires. Ceux-ci se prolongent directement en saccules glandulaires
sécrétoires, formés par une couche de cellules cubiques avec des noyaux ronds
situés près de la base et un protoplasme finement granuleux. Ces saccules se
ramifient quelquefois en deux branches, qui forment un certain nombre de flexions.
Le groupe glandulaire total est entouré par une mince couche de tissu conjonctif
fibrillaire, qui renferme beaucoup de cellules pigmentaires allongées, noires et
pénètre aussi entre les parties épithéliales des glandes, étant assez riche en capillaires
sanguins (fig. 15, PI. x).

Nous avons dit plus haut que le pancréas de Gonostoma se trouve dans
plusieurs cordons allongés de tissu conjonctif liés anatomiquement avec l'estomac
et l'intestin. Mais tandis que, par exemple, chez Siomias boa (fig. 26, PI. vi) et la
plupart des autres poissons étudiés par moi, les tubules pancréatiques, en se réu-
nissant, se trouvent dans l’intérieur de ces cordons, au contraire chez Gonostoma
la plus grande partie de ces tubules se trouve à la périphérie des cordons men-
tionnés, en limitant ceux-ci; le reste des tubules se trouve dans leur intérieur
(Ag. 17 et 18, PI. x). Dans une assez grande accumulation de tissu pancréatique, qui
pénètre profondément dans l'intérieur de l’un de ces cordons, se trouve une ou
plusieurs accumulations de cordons épithéliaux de Langerhans (Z.).

Il est facile de constater que chez Gonostoma le tissu conjonctif dans lequel
plongent les tubules pancréatiques avec leurs conduits, est un tissu réticulaire. Ses
cellules sont munies de 3 ou 4 prolongements fliformes, très délicats, qui s'unissent
avec les prolongements semblables de cellules voisines. + N.

PS ue

Ici on voit très bien que les tubules pancréatiques sont entourés par une
couche de cellules de tissu conjonctif, cellules très basses et aplaties ; ordinai-
rement on voit seulement les noyaux aplatis de cette enveloppe externe. Une autre
particularité intéressante consiste en ce que les tubules pancréatiques épithéliaux
donnent vers l’intérieur de l'organe entier des prolongements aigus, formés des
cellules plus internes. Ces prolongements sont en connexion intime avec le tissu
réticulaire (fig. 17, PI. x).

Les noyaux des cellules pancréatiques sécrétoires, dont le protoplasme
renferme, comme ordinairement, des granules dans sa partie interne, sont munis
de nucléoles assez grands ; la chromatine forme ici de fines granulations, dont
une partie se trouve à la périphérie, une autre autour du nucléole. Les fins filaments
radiaux de linine unissent les granulations périphériques avec les centrales.
Directement auprès du noyau se trouve un corps arrondi ou ovoïde, qui se
colore un peu plus intensivement que le protoplasme environnant ; c’est le
« Nebenkern ». A présent nous savons que celui-ci représente dans les cellules
pancréatiques très probablement une formation homologue de « l'appareil réticu-
laire » de Golgi ; je suppose cela en me basant sur les faits analogues, trouvés chez
d'autres vertébrés par plusieurs de mes élèves à l'Institut Zoologique de Léopol.

Dans la paroi stomacale de Gonostoma on trouve assez souvent des corps
énigmatiques, qui sans doute sont des parasites. J'en ai trouvé seulement deux
modifications, probablement deux phases de leur développement et c’est pourquoi
leur nature ne pouvait pas être bien étudiée. On voit sous la couche de tissu
conjonctif fibrillaire sous-épithéliale entre les accumulations de glandes stomacales,
un corps plasmatique rond avec deux sortes de noyaux : périphériques aplatis
et centraux arrondis, pauvres en chromatine. Une autre fois j'ai trouvé deux
corps plasmatiques arrondis, lun auprès de l’autre, de même structure: assez
souvent on voit dans ces deux corps une petite cavité centrale (fig. 16, PI. x).
Le corps unique ou les deux corps jumeaux sont entourés par une couche
plasmatique, qui se colore intensivement par l’éosine; il renferme des noyaux
arrondis et de grandes accumulations de pigment noir ou jaunâtre. Le tout est
entouré par un tissu conjonctif fibrillaire lâche d'une structure concentrique (fig. 16),
sorte de capsule.

L'intestin et les appendices pyloriques. — La structure de ces parties du canal
digestif de Gonostoma ne présente rien d’extraordinaire en comparaison avec les
autres formes de poissons décrites par moi.

La paroi de l'intestin pylorique (duodénum) est la plus épaisse, celle des
appendices pyloriques est un peu plus mince, tandis que l'intestin moyen et
le rectum ont la paroi la plus mince.

Dans l'intestin pylorique les hautes cellules épithéliales montrent le caractère
de cellules épithéliales stomacales, elles sont en effet munies d’un « tampon »
au sommet. Les cellules épithéliales des appendices pyloriques et de l'intestin

en —

moyen sont munies de bordures en brosse. Dans l'intestin on voit partout
des cellules mucinogènes (Becherzellen) en nombre restreint et beaucoup de Iym-
phocytes entre les cellules épithéliales. Partout aussi on voit une couche musculaire
lisse circulaire interne et une longitudinale externe. Ces couches musculaires
sont fortement développées dans l'intestin pylorique, plus faiblement dans l'intestin
moyen, comme chez les autres poissons de grande profondeur.

Chez Gonostoma grande l'épaisseur de la paroi intestinale (intestin moyen) n'est,
en général, pas aussi faible que par exemple chez Cyema atrum ou plusieurs autres
poissons décrits par moi, mais en comparaison avec l'épaisseur de la paroi stomacale
ou de la paroi de l'intestin pylorique chez Gonostoma elle est cependant très petite,
ce que nous montrent les données suivantes : la hauteur (l'épaisseur) de la couche
épithéliale dans l’intestin moyen de Gonostoma est 55, l'épaisseur de la couche
de tissu conjonctif fibrillaire sous-épithéliale est 3 u, l'épaisseur de la couche
musculaire interne circulaire est 10 et celle de la couche musculaire externe
longitudinale est 54. Ainsi nous voyons que l'épaisseur de la couche épithéliale
est ici environ trois fois aussi grande que l'épaisseur de toutes les couches
sous-épithéliales prises ensemble.

CHAPITRE CINQUIÈME

Les organes photodotiques (lumineux) du S/omias boa (Risso).

Ces organes ont été décrits déjà par plusieurs auteurs: Ussow (1879), Gatti
(1903), von Lendenfeld (1905) et A. Brauer (1908). La structure histologique de
ces organes a été décrite de la manière la plus précise par Brauer ; cependant
Je suis en état de compléter sur plusieurs points les recherches de cet excellent
observateur.

Chez Siomias on peut diviser les organes lumineux en simples et en composés.
Les simples ont été divisés par Brauer en petits organes non pigmentés et
en organes pigmentés de différentes formes et sortes. Aux organes simples
pigmentés appartiennent aussi les organes lumineux qui se trouvent dans le
barbillon.

D'après Zugmayer (1911) les organes lumineux chez Stomias boa sont disposés
sur le tronc de la manière suivante : au-dessus de la série latérale s'étendent deux
séries d'écailles hexagonales, dont chacune porte un petit organe à son angle
inférieur, l'hexagone ayant ses pointes tournées en haut et en bas. Au-dessus de
ces deux séries il y a encore quatre séries d'écailles semblables dont chacune
porte un petit organe au centre. Dans la série inférieure chaque écaille porte,
outre l'organe ventral et au-dessous de celui-ci, un groupe formé de 4-7 Organes
minuscules. Donc chaque écaille est pourvue au moins d’un organe. Les rayons
des nageoires sont également parsemés de petits organes photodotiques.

Quant à moi, je décrirai avant tout le barbillon avec ses organes lumineux.
Zugmayer (Résultats Camp. sc. Fasc. xxxv, p. 72) s'exprime ainsi sur le bar-
billon chez Stomias boa : « Quand le barbillon de la symphyse mandibulaire est
intact, il est plus long que la tête et finit en trois petits tentacules, mais souvent
il a été blessé et la partie régénérée ne porte que deux tentacules où même se
termine en simple pointe ». Il n’est pas juste de nommer cet organe « barbillon de
la symphyse mandibulaire », parce qu 1l ne se trouve pas sur la symphyse, mais
sur l'attache (copula) de l’hyoïde. D'après Zugmayer, la longueur du barbillon chez
un Sfomias boa qui avait 205%" de longueur, était 0" 025.

D'après Brauer chez toutes les espèces de Siomias le barbillon « geht von
der knorpeligen Copula des Hyoids aus, verjüngt sich almählich, schwillt nahe dem
Ende aber wieder etwas an und läuft an der Spitze in drei Fäden aus. Sie selbst (die

ne

Barbel) wird durch keine Skeletteile gestützt. Ebenso dringen keine Muskeln…
in sie ein. Die Bewegung der Barbel künnte nur durch An-und-Abschwellen der
Blutgefässe, die sie durchziehen, erfolgen ». Je peux confirmer toutes ces obser-
vationsde Brauer, cependant je dois ajouter que quoique le barbillon ne renferme
aucune « partie squelettique » selon cet auteur, néanmoins il pénètre dans la
partie basale de cet organe, de la copula de l’hyoïde, un tissu conjonctif assez
fort et rigide, qui forme une sorte d’axe squelettique pour cette partie du barbillon.
Plus bas je décrirai la structure histologique de ce tissu.

La glande qui se trouve dans le renflement terminal du barbillon chez
Siomias hexagonatus est formée, d’après R. v. Lendenfeld, de cellules rangées
radialement ; d’un côté pénètre dans la glande un cordon étroit de tissu conjonctif
fibrillaire qui remplit le petit espace central. Brauer donne plus de détails sur
la structure histologique du barbillon chez Siomias Valdiviæ. D'après lui, dans
le corium du barbillon et des filaments terminaux il y a de grandes cellules
pigmentaires ; (l’épithélium de la peau était partout déchiré ou manquait complè-
tement, Ce qui avait aussi lieu dans toutes les préparations que j'avais à ma
disposition). Dans le renflement terminal le pigment forme seulement un champ
triangulaire, dense, sur la face ventrale du barbillon. Dans son intérieur se trouve,
d’après Brauer, un tissu conjonctif fibrillaire lâche, avec de vastes lacunes et
beaucoup de vaisseaux sanguins, très dijatés dans le renflement terminal et dans
les filaments. Dans le barbillon pénètrent deux branches du ramus mandibularis
{rigemini qui sy ramifient abondamment.

Tous ces détails macroscopiques, observés par Brauer, je les ai trouvés
aussi chez Siomias boa, mais ici le pigment noir est accumulé non seulement
dans le champ triangulaire, sur la face ventrale du renflement terminal, mais
aussi autour de toute la base de ce renflement, en formant un anneau dorsalement
et latéralement étroit, ventralement épaissi, une sorte de champ triangulaire.

Quant aux glandes nombreuses dans le barbillon, les relations observées
par moi chez Siomias bo diffèrent en plusieurs points de celles que Brauer a
trouvées chez Sionnas Valdiriæ, cep:ndant en général la disposition et la structure
histologique de ces glandes chez les deux espèces nommées sont les mêmes.

Voyons donc comment Brauer décrit les glandes dans le barbillon de Stomias
Valdirie.

D'après lui « la plus grande partie » de la glande se trouve dans le renflement
terminal et a la forme d'une poire. La paroi de cette partie glandulaire est formée
d'une couche de cellules très étroites, longues, cylindriques, remplies par de fins
granules sécrétoires ; seulement la partie basale de la cellule, où se trouve le
noyau, ne contient pas de granules, mais est formée d'une masse souvent vacuolisée,
qui se colore en bleu par l’hématoxyline, tandis que les granules se colorent
en rouge par l’éosine. Cette partie glandulaire se prolonge dans le pédoncule (tige)
du barbillon, sur le côté ventral, où elle a un diamètre plus petit et est divisée,

+.

vers la base du pédoncule, en deux parties sous forme de cordons rapprochés
l’un de l’autre et réunis encore çà et là. Au commencement les cellules sont ici,
comme dans la partie principale (c'est-à-dire celle qui est située dans le renflement
même), longues, étroites et montrent un arrangement épithélial, mais vers la base
du pédoncule apparaissent des plis dans les parois glandulaires et les cellules
épithéliales deviennent ici plus basses, polyédriques ; leurs parties basales,
différenciées, disparaissent. Au centre de la glande il n'y a pas de cavité libre, car
celle-ci est remplie par un tissu conjonctif fibrillaire, riche en vaisseaux sanguins
et en ramifications nerveuses. Cette glande tout entière est une formation continue.
En outre, d'après Brauer, il y a dans les filaments terminaux des « accumulations
de cellules glandulaires » (Haufen von Drüsenzellen) d'une grandeur différente,
rondes et ellipsoïdales, complètement isolées mutuellement et situées dans le
corium des filaments. Leurs cellules sont semblables à celles de la glande dans
le pédoncule ; chaque groupe est entouré par une capsule de tissu conjonctif.
Quant aux nerfs, Brauer admet que probablement il n’ont rien à faire avec
l’innervation des glandes. Il pense que ce sont des nerfs sensitifs. Nous verrons
que les relations chez S/omias boa, d'après mes recherches, diffèrent beaucoup
des relations décrites ci-dessus.

Je décrirai avant tout la structure du renflement terminal et puis celle du
pédoncule et des filaments terminaux.

Le renflement terminal. — La formation la plus importante dans ce renflement
est la glande arrondie, un peu piriforme et, comme le montrent les coupes
longitudinales, formant un certain nombre de plis assez profonds, on peut même
dire un certain nombre de petits lobes, visibles surtout dans la partie basale
de la glande dirigée vers le pédoncule, tandis que la partie apicale dirigée vers
les filaments terminaux est presque uniforme, non lobée. Certains plis épithéliaux
sont si étroits, que le tissu conjonctif environnant n'y pénètre pas; les autres
sont un peu plus larges et ici pénètrent les vaisseaux sanguins ou les ramifications
nerveuses, accompagnées par une petite quantité de tissu conjonctif lâche (fig. 1,
PI. x). La glande est compacte, fermée, c'est-à-dire sans conduit, formée de
cellules épithéliales extrêmement hautes et étroites, plus larges à la base qu’au
sommet. La hauteur de ces cellules est 600-800, la largeur à la base 25-30 u,
au somimet environ 10 y.

Dans chaque cellule épithéliale on distingue une petite partie basale, homogène,
faiblement vacuolisée et une partie beaucoup plus grande, où le protoplasme
est finement granuleux et fortement vacuolisé, surtout vers le sommet. Le noyau
ovoïde est situé dans la partie basale, à la limite de la partie granuleuse. Les granules
qui sont ici fins et presque tous de même grandeur, se colorent en rouge par
l’éosine et en couleur cerise par le triacide d'Ehrlich-Biondi-Heindenhain. La
chromatine sous forme de grains se trouve en partie près de la périphérie du
noyau, en partie au centre. Sur les préparations colorées par l’hématoxyline

a

avec l'éosine, la partie basale de la cellule est bleue, le reste est rouge; sur les
préparations colorées par l'hématoxyline ferrique de Heïdenhain et ensuite par
l’éosine ou l'orange, la partie basale de la cellule est grisâtre, le reste est rouge
ou orange (coloration des fins granules). :

Une partie prépondérante des cellules aboutit jusqu'à la périphérie de la
glande, mais un certain nombre de celles-là commence plus profondément et
cest pourquoi sur les coupes longitudinales et transversales (fig. 1, 2, Pl. x1) on
trouve çà et là des noyaux entre les cellules qui commencent à la périphérie.
Ce fait na pas été observé par Brauer chez Siomias Valdiriæ.

Je peux confirmer les observations de Lendenfeld et de Brauer, qui ont
trouvé que la cavité centrale de la glande est remplie par un tissu conjonctif
fibrillaire renfermant des vaisseaux sanguins et des nerfs. Ce tissu conjonctif
central se réunit en plusieurs points avec le tissu conjonctif fibrillaire périphérique,
principalement à la base de la glande; pour sa part celui-ci émet des prolongements
radiaux, qui avec les capillaires sanguins et les ramifications nerveuses très minces
pénètrent çà et là assez profondément entre les cellules épithéliales de la glande
(Hg. 1, PI. x1. Ces faits, ainsi que quelques autres qui seront décrits plus loin
permettent, selon moi, d'admettre que ces ramifications nerveuses servent à
l'innervation de la glande elle-même (nerfs trophiques, sécrétoires) : néanmoins
un certain nombre de nerfs, comme l’admet avec raison Brauer, passe seulement
par la glande pour pénétrer de là dans les filaments terminaux. Les plus gros troncs
nerveux, qui pénètrent dans les filaments terminaux, se trouvent en dehors de
la glande, entre celles-ci et le corium, ce qu’on voit sur une coupe transversale
(tg,.-6:-PExy;:

A la base de la glande, surtout du côté ventral, mais aussi du côté dorsal, on
voit une accumulation pigmentaire en plusieurs lamelles (fig. 6, PI. x1).

Sur les coupes transversales d’une partie plus basale ou plus apicale du ren-
flement terminal, chez certains exemplaires aussi sur les coupes par la partie
centrale de ce renflement, on voit en dehors de la glande principale un certain
nombre de petites glandes périphériques, aplaties, qui appartiennent déjà aux
glandes du pédoncule (tige) ou à celles des filaments terminaux. Ces glandes
peuvent pénétrer plus ou moins profondément dans le renflement terminal,
mais elles ne s'unissent pas avec la glande principale de celui-ci.

Chez l'espèce décrite par Brauer, la glande principale se prolonge directement
dans le pédoncule. Au contraire chez l'espèce que j'avais à ma disposition on
n'observe pas un tel prolongement ; les glandes du pédoncule et des filaments
terminaux sont tout à fait libres et indépendantes de la glande du renfiement
terminal, quoique, comme je l'ai déjà dit, elles puissent en partie pénétrer dans
celui-ci, où elles se trouvent en dehors de la glande principale, dans le corium ou
dans le tissu fibrillaire lâche, directement au-dessous du corium.

Le pédoncule (tige) (fg. 3,5, 7, 9, 10, PI. x.) Nous avons déjà dit que la base

+ —

du pédoncule du barbillon se trouve sur la « copula » cartilagineuse de lhyoïde
et que dans sa partie basale on voit au milieu une sorte d'axe, formé d'un tissu
particulier, fort et rigide. On peut le caractériser comme une forme de passage
entre le tissu conjonctif fibrillaire et le tissu cartilagineux, car il est formé d'une
substance intercellulaire plus ou moins homogène avec de nombreuses cellules
lentilliformes ou ovoïdes, et un nombre très restreint de fibres singuhères très
fines. Ces cellules se trouvent dans de petites cavités ovoïdes et la substance
intercellulaire qui entoure directement celles-ci est plus dense et se colore plus
intensivement par l’hématoxyline que le reste. Il se forme ainsi de petits « ter-
ritoires irréguliers » de la substance intercellulaire, qu'on peut regarder comme
homologues des « capsules » dans le tissu cartilagineux typique. Çà et là on voit
que la cellule émet un prolongement plasmatique, qui s’unit avec la cellule voisine
ou pénètre dans la substance intercellulaire en y finissant. Cet axe central de la
partie basale du pédoncule est percé par les deux branches nerveuses principales
et par les grands troncs de vaisseaux sanguins.

Les glandes du pédoncule montrent une disposition très caractéristique et
régulière, ce que Brauer n'avait pas trouvé chez l’espèce observée par Ii. Dans la
partie apicale du pédoncule, qui aboutit au renflement terminal, les glandes sont
situées à la périphérie, directement au-dessous du corium, mais elles forment ici
des accumulations irrégulières, assez grandes. Sur les coupes longitudinales par le
pédoncule on voit dans cette partie là une glande au-dessous de l’autre, mais çà
et là on voit aussi au même niveau deux ou trois glandes coupées (fig. 3, PI. x1)}. Au
contraire plus loin vers la base du pédoncule on voit sur les coupes longitudinales
des rangées assez régulières de glandes ; chacune de celles-ci est séparée par une
cloison de tissu conjonctif compact (du corium) des glandes voisines placées au
niveau plus haut ou plus bas (fig. 7, PL x).

En même temps les coupes transversales par cette partie du pédoncule
montrent que les glandes sont ici situées à la périphérie très régulièrement et que
chaque glande est séparée des glandes voisines au même niveau par des cloisons
radiales. Ces cloisons sont bien visibles sur la fig. 7, PI. x1. Ainsi nous voyons dans
le corium des cloisons radiales et transversales, en un mot il y a ici un système
assez régulier de cloisons qui séparent les glandes voisines de mêmes niveaux
et des niveaux différents.

Il est intéressant de voir que chacune de ces glandes du pédoncule recoit
son nerf et ses vaisseaux sanguins, qui pénètrent dans la glande le plus souvent
entre deux cloisons radiales voisines (fig. 5, PI. xn. Quelquefois le nerf et les
vaisseaux pénètrent d’abord dans la cloison même et d'ici dans les glandes voisines.

Quant à la structure histologique des glandes du pédoncule, elle ressemble
en général à celle de la glande principale dans le renflement terminal. Ces glandes
sont formées de cellules épithéliales très hautes et étroites, avec des noyaux
situés près de la base ; les conduits glandulaires et la cavité centrale manquent

se Bg =

ici (glandes fermées et compactes). Cependant il y a plusieurs différences entre
la structure de ces glandes et celle de la glande du renflement terminal.

Les cellules épithéliales dans les glandes du pédoncule ne sont pas en général
aussi hautes, leurs noyaux sont plus rapprochés de la base. Dans la glande du
renflement terminal le protoplasme basal, homogène, sans granulations, se trouve
totalement sous le noyau; au contraire dans les glandes du pédoncule le noyau
se trouve au centre de ce protoplasme basal (fig. 5, PI. x1). Une autre différence
consiste en ce que le protoplasme renferme ici non seulement des granulations
fines, mais aussi de grands granules arrondis, ovoïdes ou plus allongés, qui sé
colorent en rouge par l’éosine et en couleur cérise par le triacide d’Ehrlich-
Biondi-Heidenhain (fig. 5, PL. xi).

Dans la partie périphérique de la glande les limites entre les cellules voisines
sont très distinctes, mais vers le centre de la glande ces limites s’effacent souvent
et Je pense qu'ici peut facilement se former un syncytium. Dans le centre de la
glande j'ai souvent vu des capillaires sanguins et des nerfs, accompagnés d’une
très petite quantité de tissu conjonctif fibrillaire. La présence de capillaires et
de nerfs dans les glandes et l’absence de conduits permettent d'admettre que
ces glandes fonctionnent comme organes à sécrétion interne.

Les filaments terminaux. — Les coupes longitudinales et transversales montrent
que les glandes dans les filaments terminaux sont situées principalement près
de la périphérie, dans le corium ou directement au-dessous de celui-ci. Leur
disposition n’est pas ici aussi régulière que dans le pédoncule, mais vers le
sommet du filament cette disposition devient plus régulière et sur les coupes
transversales on voit que chaque glande se trouve ici près de la périphérie,
étant entourée par une capsule de tissu conjonctif fibrillaire très compacte (fig. 4,
PI. x1). Les parois des capsules voisines, qui se touchent mutuellement, forment
une sorte de cloisons radiales entre les glandes. La surface externe de chaque
capsule est couverte par une couche de cellules pigmentaires, noires, fusiformes
ou ramifiées.

L'axe du filament est rempli par un tissu conjonctif fibrillaire très lâche,
qui renferme les troncs de vaisseaux sanguins, les ramifications nerveuses et les
cellules pigmentaires noires.

La structure histologique des glandes du filament ressemble beaucoup à celle
des glandes du pédoncule. Ici, comme là, les cellules épithéliales sont hautes,
rangées radialement ; leurs noyaux se trouvent près de la base, où le protoplasmé
n'est pas granuleux, tandis que le reste du protoplasme montre une abondance
de granulations fines et de granules beaucoup plus grands, arrondis ou allongés ;
certains de ces granules sont vraiment énormes.

Les grands granules se trouvent ici principalement dans les parties les plus
centrales des cellules. A cause de ces granules énormes, les limites entre les
cellules voisines dans la partie centrale de la glande sont presque invisibles,

F2 -Ns

tandis que vers la périphérie on voit ces limites très distinctement. Je suppose
qu'au centre de la glande il y a une sorte de syncytium.

En examinant les séries de coupes j'ai vu plusieurs fois que les petites branches
nerveuses pénètrent dans l’intérieur des glandes, où on peut les poursuivre
jusqu'à la partie centrale de la glande.

Chez l'animal vivant le barbillon peut modifier sa longueur et son épaisseur.
Brauer a raison lorsqu'il dit que cette modification s'opère par une dilatation
et une contraction des vaisseaux sanguins à l’intérieur du barbillon. En examinant
la structure histologique de ces vaisseaux à l’aide de la méthode de Weigert
(résorcine-fuchsine), j'ai constaté que leurs parois sont munies d'éléments élastiques
sous forme de très nombreuses et fines fibrilles circulaires et longitudinales,
dont un certain nombre pénètre aussi dans le tissu conjonctif fibrillaire environnant,
comme nous le voyons sur la fig. 10, PI. xr (coupe longitudinale, colorée par la
résorcine-fuchsine de Weigert).

Ainsi il est évident que la structure histologique si singulière du barbillon
est en connexion intime avec sa faculté de modifier ses dimensions. L’abondance
de vaisseaux sanguins assez larges et lacunaires, une riche innervation, la présence
d'éléments élastiques non seulement dans les parois des vaisseaux sanguins,
mais aussi en partie dans le tissu conjonctif environnant, tous ces faits expliquent
cette faculté du barbillon.

D'après A. Brauer aux organes photodotiques composés de Siomias appar-
tiennent deux formes d'organes : 1° les organes caliciformes (becherfôrmige Organe)
et 2° les organes en forme de bouteilles (flaschenfürmige Organe).

R. v. Lendenfeld a décrit seulement les organes caliciformes, mais cette
description n'est pas détaillée ; selon lui ces organes chez Siomias ressemblent
beaucoup aux organes homologues chez Chauliodus.

Gatti a décrit deux formes de ces organes ; sa description, en général
exacte, a été cependant corrigée et complétée par Brauer en plusieurs détails
importants.

Nous verrons plus loin que les relations trouvées par moi chez Siomias boa
diffèrent en quelques détails des relations chez Siomias Valdiviæ, d'après les
belles recherches de Brauer. |

Les organes composés en forme de bouteille sont les plus grands et forment
sur le tronc du corps deux rangées de chaque côté : une ventrale et une ventro-
latérale. D'après Brauer 1ls se trouvent aussi sur la membrane branchiostégale,
sur l’opercule et dans le groupe orbitaire. La forme de bouteille est déterminée
par la forme de l’enveloppe pigmentaire et, ce que Brauer a bien observé, elle est
d'autant plus irrégulière que la paroi médiane du cou de la bouteille est plus longue
que la paroi latérale ; ses bords sont ainsi coupés obliquement, beaucoup plus
dans les organes latéro-ventraux que dans les organes ventraux, ce qu'on voit
en comparant les fig. r et 2 de la PI. xr.

on

Brauer décrit dans ces organes les détails suivants : Dans la « partie ventrale »
(Bauchteil) les cellules épithéliales sont hautes, glandulaires, placées radialement et
munies d’un protoplasme basal (où se trouve le noyau) homogène, tandis que le
reste du protoplasme est granuleux. La cavité centrale manque, mais le petit espace
central, limité par les sommets de cellules glandulaires, est rempli par un tissu
conjonctif, qui se réunit à l’aide de prolongements (Fortsätze) entre les cellules
glandulaires avec l'enveloppe externe, formée de même par un tissu conjonctif.
Dans cette partie ventrale s'enfonce sous forme d’un coin la grande masse cellulaire,
le « cristallin » composé de cellules polyédriques renfermant des granulations
extrêmement fines. Le noyau est entouré par la partie de protoplasme homogène
qui se trouve à la paroi de la cellule. Le corps compact qui forme le « cristallin »
est encore entouré latéralement par une couche de cellules glandulaires de même
nature que les cellules radiales dans la partie proximale (ventrale) de l'organe.
Le réflecteur et le corps gélatineux sont développés « comme habituellement ».

Je confirme toutes ces observations de Brauer, mais jai observé encore
quelques particularités, non mentionnées par le savant allemand chez Siomias
Valdiviæ, à savoir :

1° Les cellules glandulaires, situées radialement, sont élargies, arrondies à la
base et amincies au sommet ; la partie basale de protoplasme homogène
est riche en vacuoles et renferme un noyau rond, assez riche en chromatine;
le reste du protoplasme est rempli par une très grande quantité de granules,
qui se colorent fortement par l’éosine et très fortement par la fuchsine. Le pro-
toplasme basal homogène se prolonge assez loin vers le sommet à la périphérie de
la cellule comme une couche extrêmement mince (fig. 8, PI. xn). Sur les préparations
colorées par l’hématoxyline et l'éosine le protoplasme est bleu (la partie basale
beaucoup plus intensivement), les granulations sont rouges. Sur les préparations
colorées par le triacide d'Ehrlich-Biondi-Heidenhain le protoplasme basal est
jaunâtre, les granulations ont la couleur cerise. Çà et là on trouve parmi les petites
granulations des granules plus grands, pariois vacuolisés.

2° Entre ces cellules glandulaires épithéliales on voit un grand nombre de
cellules presque de même longueur, extrêmement minces, on peut dire fibriformes,
avec un noyau au centre, très allongé, bacilliforme, riche en chromatine (fig. 8,
PI. x). Ces cellules appartiennent au tissu conjonctif ; parfois elles sont si
nombreuses, que sur les coupes on trouve presque partout entre deux cellules
épithéliales voisines une semblable cellule fibriforme. Brauer a mentionné la
présence générale d’un tissu conjonctif entre les cellules épithéliales, mais il ne
dit rien sur les cellules minces, si caractéristiques.

3° Dans le cristallin j'ai trouvé partout deux formes de cellules. Notamment
à la base, à la limite des cellules glandulaires radiales et du tissu conjonctif central
(4. c, fig. 1, PI. xn) on voit une accumulation centrale de cellules, qui sur les pré-
para‘ions non colorées ont une couleur naturelle rougeâtre (sur les coupes en

paraffine collées sur verre on distingue bien cette couleur naturelle), tandis que les
cellules d’autres parties du cristallin ne présentent pas cette coloration. Dans les
organes photodotiques ventraux du tronc cette accumulation de cellules centrales
est lentilliforme, biconvexe, un peu plus aplatie ; dans les organes ventro-latéraux
elle n'est pas aplatie, mais fortement biconvexe (fig. 1 et 2, PI. xu). La forme de
ces cellules centrales est assez régulière ; elles sont polygonales ou arrondies et
toutes ont presque les mêmes dimensions, tandis que dans la partie périphérique
du cristallin les cellules montrent des formes et des dimensions très différentes
(fig. 9, PI. xn). Seulement les cellules de l’amas central, qui aboutissent aux cellules
glandulaires, sont allongées et ont une direction radiale (fig. 1, PI. xu), ce qui a lieu
seulement dans les organes ventraux et pas dans les organes ventro-latéraux.

La différence de structure dans ces deux sortes de cellules du cristallin est
visible sur les fig. 9 et ro, PI. x, où elles sont représentées sous un fort grossis-
sement. Dans les cellules centrales (fig. 10, PI. xu) le protoplasme forme une grande
masse homogène autour du noyau, qui se trouve le plus souvent au centre ;
dans la partie périphérique de la cellule le protoplasme est vacuolisé. Ici entre Îles
grandes vacuoles on voit de minces filaments protoplasmiques radiaux et je pense
que ce n'est pas un arfefactum, parce que j'ai trouvé les mêmes relations sur
des préparations conservées et fixées à l’aide de méthodes différentes (liquides
de Bouin, de Teleysnitzky, de Müller, sublimé).

Les cellules périphériques du cristallin (fig. 9, PI. x) renferment autour du
noyau (le plus souvent pas central mais plus ou moins excentrique) un protoplasme
finement granuleux en quantité assez restreinte tandis que le reste du corps
cellulaire renferme de nombreuses vacuoles entre lesquelles le protoplasme
forme une sorte de réseau extrêmement fin. Cà et là, mais en général rarement,
jai trouvé ici des globules de graisse assez grands (ils se colorent d'une manière
caractéristique par le soudan ]).

Une autre différence entre les masses cellulaires centrale et périphérique
du cristallin consiste en ce que, tandis que la centrale ne renferme point de
tissu conjonctif, la masse périphérique est divisée à l’aide de minces cloisons
de tissu conjonctif en un certain nombre de colonnes, situées plus ou moins
radialement (fig. 1 et 2, Pl. xn). Çà et là on voit entre les cellules de la masse
périphérique de grandes vacuoles, tandis que la masse centrale est beaucoup
plus compacte.

4° En plusieurs points on voit des différences entre les organes photodotiques
composés de la ligne ventrale et ceux de la ligne ventro-latérale, à savoir :
a) Les organes de la ligne ventrale sont beaucoup plus grands que ceux de la
ligne ventro-latérale ; leur hauteur est presque égale ici et là, mais les premiers
sont plus de deux fois aussi larges que les derniers. b) La couche de cellules
glandulaires (radiales) est plus fortement enfoncée du côté du cristallin dans les
organes ventraux, que dans les ventro-latéraux. c) La surface externe du cristallin

EE

est plus convexe dans les organes ventraux que dans les ventro-latéraux. d) La
différence entre la forme du corps gélatineux et du réflecteur (qui est formé de
fibres extrêmement longues et minces, munies de noyaux allongés) dans les
organes ventraux et ventro-latéraux est visible sur les fig. ret2, PL. xx.

Parmi les organes photodotiques pigmentés plus petits que ceux de la ligne
ventrale et ventro-latérale Brauer distingue les trois sortes suivantes : 1° « kleine,
einfache, pigmentierte Organe »; 2° kleinere, becherfürmige zusammengesetzte
Organe » ; 3° grôssere, becherfürmige zusammengesetzte Organe ». Les premiers,
c'est-à-dire les organes simples pigmentés qui chez l'animal conservé présentent
de petits points aux bords noirs, se trouvent sur les côtés de la tête, du tronc,
sur les maxilles et dans la cavité buccale ; ils sont sphériques, allongés, coniques
ou en forme de petites saucisses, dont l'axe long est perpendiculaire (ou horizontal)
à la surface du corps. D’après Brauer la partie plus centrale de l'organe, entourée
par la couche pigmentaire, est formée de cellules munies d’une couche plasmatique
basale homogène, qui se colore plus intensivement en bleu par l'hématoxyline ;
au contraire dans la partie plus périphérique, où il n’y a pas d’enveloppe
pigmentaire, les cellules sont privées d'une semblable couche basale. Tous les
« Binnenkôrper » (c'est-à-dire les parties épithéliales des organes) sont formés
de cellules glandulaires, qui donnent « ein regelmässiges Wandepithel » et sont
cylindriques ou coniques.

D'après mes recherches seulement les organes sphériques les plus petits sont
formés d’une couche de cellules épithéliales glandulaires, hautes, cylindriques
ou coniques, avec une couche plasmatique homogène basale, où se trouve le
noyau ; ces cellules sont posées radialement et leurs sommets se touchent au
centre; la cavité centrale manque complètement.

Au contraire les organes de cette catégorie un peu plus grands, ovoïdes,
coniques ou encore plus allongés, sont formés d’après mes recherches de deux
sortes de cellules épithéliales très différentes. Notamment, comme le montrent
les fig. 4 et 6, PI. xu, dans la partie plus interne (plus centrale) entourée par la
couche pigmentaire, les cellules épithéliales sont situées radialement, d’une
manière très régulière, comme dans les organes composés en forme de bouteille
(fig. 1, PL. xn). Ces cellules sont hautes, coniques, élargies à la base, où se trouve
le protoplasme homogène, sans aucune granulation, qui se colore en bleu par
l’'hématoxyline; dans ce protoplasme se trouve le noyau rond. Le reste du
protoplasme montre des granules très fins, qui se colorent faiblement en rouge
par l’éosine. Dans la partie plus périphérique (externe) de l'organe, où il n'y a
pas d’enveloppe pigmentaire, on voit une masse cellulaire compacte, qui pénètre
sous forme de coin dans la couche des cellules coniques nommées plus haut.
Les cellules qui forment cette masse sont plus petites, polygonales, sans un
protoplasme basal homogène, munies de noyaux ronds au centre et plus riches
en chromatine. Le protoplasme renferme partout des granulations semblables

—ÿÿ —
à celles des cellules coniques et se colorant de même en rouge par l’éosine. Le
protoplasme de ces cellules se colore en général tout entier plus intensivement
par l'hématoxyline avec l’éosine que le protoplasme des cellules coniques et c'est
pourquoi on voit très distinctement ces deux sortes de masses cellulaires sur
les coupes de l'organe.

En comparant ces coupes avec les coupes par les organes composés en forme
de bouteille (fg. 1, 2, PI. x) on voit que la masse cellulaire décrite ci-dessus
répond à la masse cellulaire qui forme le cristallin dans les organes en bouteille,
quoique le degré de différenciation histologique dans les organes mentionnés
plus haut ne soit pas aussi distinct que dans ces derniers.

Dans les organes que Brauer appelle « kleinere und grôssere becherfürmige,
zusammengesetzte Organe » et qui se trouvent sur le tronc près et entre les
organes en bouteille (ceux-ci forment, comme nous savons, deux rangées ventrales
et deux ventro-latérales), sur l'isthmus, sur la membrane branchiostégale et sur
la voûte de la cavité orale, cet auteur distingue les cellules épithéliales plus
proximales des plus distales; celles-là situées radialement, régulièrement et
munies d’un protoplasme basal homogène (où se trouve le noyau), celles-ci
situées irrégulièrement, plus petites, sans protoplasme basal homogène. Les unes
et les autres renferment des granulations très fines.

J'ai confirmé ces observations de Brauer et je donne deux dessins (fig. 3 et 5,
PI. xn) qui représentent ces organes.

Dans les organes plus petits (fig. 5, PL. xnr) j'ai observé un arrangement plus
régulier des cellules dans la partie distale de l'organe, ce que je n'avais pas vu
dans les organes plus grands. D’après Brauer ces relations sont inverses ; il
représente dans les organes plus grands un arrangement plus régulier de ces cellules
distales. |

Selon moi toute la masse des cellules distales correspond à la masse cellulaire
du cristallin dans les organes en forme de bouteille.

Comme nous l'avons vu plus haut, ce cristallin chez Siomias boa est formé par
les cellules centrales avec un protoplasme plus compact, homogène, qui se colore
plus intensivement et par les cellules périphériques (plus distales), qui se colorent
moins fortement. On peut donc dire que ces cellules centrales homogènes, qui se
colorent d’une manière si intense en rouge dans les organes caliciformes sont
homologues des cellules centrales et les cellules distales irrégulières de ces organes
homologues des cellules distales irrégulières du cristallin dans les organes en forme
de bouteille.

Mon idée de cette homologie est confirmée d’une manière intéressante par le
fait suivant que j'ai observé : dans les organes photodotiques composés en forme
de bouteille chez Photosiomias Guerneï (fig. 7, PI. x) j ai trouvé dans les organes
de la ligne latéro-ventrale du tronc (en avant de la nageoire anale), entre la couche
des cellules centrales, radiales, glandulaires (hautes, coniques, avec un protoplasme

9 —

basal homogène, comme chez Siomias boa Risso) et la masse de cellules plus
petites, polygonales, irrégulières du cristallin * (divisée, comme chez Stomias boa
en plusieurs parties par des cloisons de tissu conjonctif) un certain nombre de
cellules polygonales très grandes, avec un protoplasme complètement homogène,
hyalin, qui se colore très intensivement en rouge par l’éosine, avec un noyau rond
au centre. On voit ces cellules sur la fig. 7, PI. xn. Parlois elles sont arrangées
jusqu'à un certain point radialement. Les cellules susnommées répondent sans
doute aux cellules intensivement colorées par l’éosine dans les organes composés
caliciformes chez Siomias boa. Ces organes chez Photostomias Guernei présentent
quant à leur structure une forme de passage entre les organes caliciformes com-
posés de Siomias boa et les organes composés en forme de bouteille chez cette
espèce.

En comparant ces trois sortes d'organes nous voyons clairement l'homologie
des amas cellulaires, qui se colorent intensivement par l’éosine dans les organes
caliciformes, avec les cellules centrales du cristallin dans les organes en forme de
bouteille chez S'omias boa.

Quant à la capsule de tissu conjonctif très fine, observée par Brauer dans tous
ces organes chez Somias boa, je confirme complètement les observations de ce
savant. J'ai aussi vu, comme Brauer, que ce tissu peut pénétrer entre les cellules
épithéliales. |

D'après cet auteur la partie proximale (centrale) de tous ces organes (simples et
composés) est enveloppée par une couche pigmentaire, tandis que la partie distale
est entourée par une membrane ayant la forme d’un verre de montre, sans pigment
et sans noyaux, qui « geht direkt von den Rändern des Pigmentmantels » (pag. 84).
D'après mes observations cette membrane ne renferme jamais de noyaux, elle est
homogène et ne sort jamais de la couche pigmentaire, comme dit Brauer, mais se
prolonge dans l'hémisphère proximal (central) de l'organe, où elle se trouve direc-
tement sous la couche pigmentaire. Parïois elle est fortement collée à celle-ci et
alors on peut facilement croire qu'elle est un prolongement direct de la couche
pigmentaire, ce qui n'a jamais lieu.

* Dans les cellules du cristallin, comme dans celles de la partie centrale de l’organe, c’est-à-dire
dans les cellules glandulaires, excepté le protoplasme basal, il y a des granulations très fines dans le
protoplasme ; seulement dans la partie plus proximale du cristallin le protoplasme est presque homogène.

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LÉGENDE DE LA PLANCHE I

Reïns du Gastrostomus Bairdi {Gill et Ryder).

Fig. 1,2,4,8,10. Coupes transversales par diverses parties des canalicules

rénaux...... 2. ie Di RS Se

Voir les particularités dans le texte.(Fig. r,2,8, 10. Oc.4. S. 1/12 hom.
imm. Zeiss. Fig. 4. Oc. 4. S. C. Zeiss).

— 3, Le rein avec la partie postérieure d’un ovaire et du rectum.
A, anus; ©, ovaire; M, rectum; B, extrémité postérieure de l’ovi-
ducte ; À, rein; U, orifice externe de la vessie urinaire.

— . 5, Coupe transversale par une partie de la paroi de la vessie

HÉAILES EE A

Coloration par l’hématoxyline avec l’éosine, les muscles sont rouges.
(Oc. 4. S. 1/12 hom. imm. Leitz).

— 6, 7. Coupés traine versales par le ré 2 2 5.

c, canalicules rénaux ; f, formations canaliculaires énigmatiques (voir
le texte) ; !, lacune sanguine ; y. c, veine ventrale ; y. d, veine
dorsale. (Oc. 4. S. a, Zeiss).

— 9. Coupe transversale par la vessie urinaire (». u.) et les
CONCLUS PACA (CC, EL. D... ne
(Oc. 4. S. AA. Zeiss).
— IO, II. Ccupe transversale par une partie de la vessie urinaire
(y. u.) et du conduit rénal principal fc. r.p.)......
(Oc. 4. S. AA. Zeiss).
— 12. Coupe transversale par une petite partie du parenchyme
rénal e + + © © + + » + + e + 9 © « + + © + + © + + + « + © + + + + © © + © e. ee « © e e

a, leucocytes éosinophiles ; b, cellules avec grands noyaux ; c, grandes
cellules ; d, cellules de tissu conjonctif ; c. r, canaliculé rénal ;
e, cellules sans granules éosinophiles ; /, lacune sanguine avec les
érythroblastes et les érythrocytes. (Oc. 4. S. hom. imm. 1/12 Zeiss),

— 13à17et8'. Coupes transversales par les formations canaliculaires

énigmatiques dans le parenchyme rénal..............

(Fig. 13-17. Oc. 4 S. 4 mm. Zeiss ; Fig. 8f. Oc. 4. S. hom. imm. 1/12
Zeiss).

POV AVE A SNA REA D D AUD A A 2 A 2 LA LA

10

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COMP) (), PL.I.

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POISSONS (ANAT

ALBERT FF PRINCE DE MONACO, CAMPSCIENT.

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_Ruffom, Piazza S Croce 20

Lit. A

Firenze

J'Nusbaum-Hilsrowiez del.et pinx.

REI

1-17 GASTROSTO)

LÉGENDE DE LA PLANCHE II

Reins d’Argyropelecus hemigymnus (Cocco) (fig. r à 13, 17 à 19);
de Chauliodus Sloanei {Bloch) (fig. 14 à 16, 20 à 24)
et de Gonostoma grande /Günther) (fig. 25, 26).
Pages
Fe, EL 2. Parties de coupes transversales par la région céphalique

(antémeuré) du réin d'Argyropeleeus....,....

g, cellules granuleuses polyédriques ; €, capillaires ; e, cellules endo-
théliales ; c. r, canalicule rénal; p. c, petites cellules parenchy-
matiques. (Oc. 4 S. hom. imm. 1/2 Zeiss).

a Coupe transversale par les parties céphaliques des reins
d'Argyropelecus..…. ..... A ane 11

r, reins; y, veine ; g, cellules granuleuses polyédriques; p. c, petites
cellules parenchymatiques ; €. r, canalicules rénaux; oc. b, l’occi-
pital basilaire (Oc. 2. S. AA. Zeiss).

— 4. Coupe transversale par la partie postérieure du rein

A rare 12
d. p, conduit rénal principal; ec, canalicules rénaux ; c. M, glomérules
de Malpighi réduits ; y, veine. (Oc. 2. S. AA. Zeiss),

— à. Coupes transversales par différentes parties des cana-

HOUISS énaux d'A rOone eus, 13
(Oc. comp. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— 10. Coupe longitudinale par un canalicule rénal et un glo-
mérule dè Malpighi avec une capsule de Bowman
orROPe es. a … __

(Oc. comp. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— II. Coupe par un glomérule de Malpighi réduit d’Argyro-

Pelecus. Re - a . =

(Oc. comp. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— 12. Coupe par la partie antérieure du rein d’A rgyropelecus.. 12
d. p, conduit rénal principal (Oc. 2. S. AA. Zeiss).

— 13. Coupe transversale par une partie du rein d'Argyropelecus. 12

e, couche externe ; 1, couche interne de la capsule de Bowman.
(Oc. 2. S. hom. imm. 1/12 Zeiss).

— 14. Coupe par un grand glomérule de Malpighi de Chauliodus. 16
(Oc. 2. S. DD. Zeiss).

ALBERT I PRINCE DE MONACO, CAMPSCIENT. POISSONS (ANAT COMP) (1), PL.II

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J.Nusbaum-Hilarowiez del.et pinx.

Firenze Lit À Ruffom,Piazza S Croce 20

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CHAULIODUS SLOANET.

LÉGENDE DE LA PLANCHE II (suite)
Pages

Fig. 15. Partie d’une coupe transversale par la région antérieure

du rein de Chauliodus...... Re à
c. M, glomérule de Malpighi; c.r, canalicule rénal. (Oc. 4 S. AA.
Zeiss).
— 16. Partie d’une coupe par un grand glomérule de Malpighi
de Chauliodus........ RS ee ne dl

(Oc. 4. S. hom. imm. 1/2 Zeiss).

— 17. Coupe par la partie postérieure du rein d'Argyropelecus. 13
d. p, conduit rénal principal. (Oc. 4. S. DD. Zeiss).
— 18, 19. Coupes transversales par une partie de la paroi de la
Véssie drinaire. d'AreÿrObelecus., : , -....;...... de
m, fibres musculaires. (Oc. comp. 4. S. hom. imm. 2mm. Zeiss).
— 20, 21. Epithélium d’un canalicule rénal primaire (fig. 20) et d’un
canalicule rénal secondaire (fig. 21) de Chauliodus..... 16
(Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
22. Coupe transversale par la partie postérieure des reins
de Chauliodus....... Re ss Le PR a 15
d, conduit rénal principal ; », veine (Oc. 4. S. AA, Zeiss).
— 23. Coupe transversale par la partie moyenne des reins de
Chautiodus = 21. een A sr. 10
d, conduit rénal principal ; y, veine. (Oc. 4. S. AA. Zeiss).
— 24. Partie d’une coupe transversale par le rein (partie

Moyenne) de CAAmMoQus, E ...., ae 16

c. p, cellules parenchymatiques ; c, capillaires. (Oc. comp. 4 S. hom.
imm. 2 mm. Zeiss).

— 25. Partie d’une coupe transversale par un glomérule de
Malpighi réduit du rein de Gonostoma grande...... 20
v, vaisseau sanguin ; e, érythrocyte ; t, tissu conjonctif. (Oc. 2. S.
hom. imm. 1/12 Zeiss).
— 26. Partie de tissu pseudolymphoïde du rein de Gonostoma
A Re a no rie ie ue 0

(Oc. 3. 4. S. hom. imm. 1/12 Zeïss).

LL LA LL

Fig.

LÉGENDE DE LA PLANCHE II

Reins (fig. r à 16) et canal digestif (fig. 7 à 2r) de formes diverses.

di
e

5

SI

10.

TI.

12 à 14.

ROIS de CHAOS AS IUGREL. DS 1... 1: re
Reins d’Argyropelecus hemigymnus. <2..........,...,
Reins de Gonostoma bathyphilum. >< 2........... rs

Coupe transversale par la partie postérieure du rein de

Gonostoma bathyphilum .......... Re —
c. M, glomérules de Malpighi ; ; d. p, conduit rénal ee g.n,
ganglion nerveux; y, veine; v.u, vessie urinaire.{(Oc.I.S. AA. Zeiss).

Coupe transversale par la partie moyenne du rein de

Gonostoma bathyphilum ............... RE
(Oc. I. S. Act. Zeiss).

Partie d’une coupe transversale par la partie antérieure

du rein de Gonostoma bathyphilum............... Le

l, leucocytes éosinophiles, qui forment une couche autour de vaisseaux
sanguins; €, canalicule rénal. (Oc. comp. 4 S. hom. imm. 2 mm.
Zeiss).

Canal digestif de Gonostoma grande. XK 2. ee. _
a, appendices pyloriques ; p, cordon de tissu en. avec les
tubules du pancréas ; f, foie.

Canal digestif de Gonostoma bathyphilum. EE

(b, côté où sont visibles les appendices pyloriques ; a, l’autre côté);
f, foie ; 1, intestin.
Canal digestif de Gonostoma elongatum. <2........... :
J; foie ; a, appendices pyloriques ; 5. p, intestin pylorique (duodénal) ;
f, foie ; s, estomac ; à, intestin ; y, vésicule biliaire.

Cana disestit de SOom ds Pod. ee 1... .
(a, entier ; b, partie antérieure, le foie a été un peu écarté de l’œso-
phage pour montrer la vésicule biliaire entière); f, foie; p, cordons
de tissu conjonctif, où plongent les tubules du pancréas ; y, vésicule
biliaire ; 1. p, intestin pylorique ; d. c, conduit biliaire : s, estomac.
Canal disestnt-de Cyema dim. E2,...:..,
f. foie; p, intestin pylorique ; s, estomac.
Canal digestif de Melamphaes mizolepis vu de différents
CÔtÉés XK 2... +. ee se © + © à + + + + © + +» + o ® + « + € © + « © o ® © + © 8 e © 0e + © +
J, foie ; a. p, appendices pyloriques ; 0, ovaire; r, rectum.

7

17

18

TL
#7
78

43

79

33

POISSONS (ANAT COMP) (1), PL. I

ALBERT [FF PRINCE DE MONACO, CAMPSCIENT.

Firenze Lit. A Ruffom, Piazza S Croce 20

REINS, CANAL DIGESTIF.
1 CHAULIODUS SLOANEIL 2 ARGYROPELECUS HEMIGYMNUS. 3-6,8 GONOSTOMA BATHYPHILUM.

7 GONOSTOMA GRANDE. 9 GONOSTOMA ELONGATUM. 10 STOMIAS BOA.

J-Nusbaum-Hilarowiez del.et pinx.

ACMEMA ATRÜUM. 12-14 MELAMPHAES MIZOLEPIS:

15-21 GASTROSTOMUS BAIRDI.

Fig.

LÉGENDE DE LA PLANCHE II (suite)

15,16. Canal digestif de Gastrostomus Baïrdi. XX 1............ -

f, foie; 1. p, intestin pylorique; c, cœur; p, pancréas ; s, estomac;

r, rectum ; 0, ovaire ; od, oviducte.

DE Estomac de Gasirosiomus Bairdi. >< 1..,.....,.:,.,...:
î, p, intestin pylorique ; y, vaisseaux sanguins.

18. Estomac de Gastrostomus Baïrdi ouvert par une coupe
TON Una, 1... EE -

19. Coupe par la couche épithéliale de l’œsophage (partie
antérieure) de Gastrostomus Baïrdi (colorée par l’héma-
toxyline-éosine) ........ EE |

m, cellule mucinogène ; s, cellule glandulaire séreuse (Oc. 4. S. hom.
imm. 2 mm. Zeiss).

20. Partie d'une coupe longitudinale par la paroi œsopha-

gienne au voisinage de l’estomac...... — Sri
m, cellules mucinogènes. (Oc. comp. 8, S. 4 mm. Apert. 0,95 Zeiss).

DE Partie d'une coupe transversale un peu oblique par la

paroi stomacale de Gastrostomus Bairdi..............

Coloration par la résorcine-fuchsine de Weiïgert; les éléments élas-

tiques sont bleus; m, couches musculaires; a, grande artère ;

y, grande veine ; g, couche glandulaire; mm, muscularis mucosæ.
(Oc. comp. 8. S. 16 mm. Zeiss).

LS T SDS LPS SNS LION SON

26

206

26

:

LÉGENDE DE LA PLANCHE IV

Canal digestif de Gastrostomus Bairdi (fig. 1 à 15).

Dr = Partie d’une coupe transversale par l'intestin moyen, l’es-
tomac et le cordon de tissu conjonctif renfermant le

DAC PÉRS -seru ses este 1e EE —
Coloration par l'hématoxyline et le van Gieson ; les muscles et les
érythrocytes sont jaunes, l’épithélium verdâtre ; le tissu conjonctif
rouge. 1, intestin moyen; e, estomac ; £. p, intestin pylorique
(duodénal) ; m, muscularis ; m. m, muscularis mucosæ ; t. p, tubules
pancréatiques. (Oc. I. Sa, Zeiss).

— 2. Fpihetur de TIMES MONO, 2 2. rer ien
Coloration par l’hématoxyline et l’éosine. (Oc. comp. 4. S. hom. imm.
2 mm. Zeiss). |

— 3. Portion de tissu de la rate accessoire, coupe transversale.
| (Oc. comp. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— À. Partie d’une coupe transversale par la rate.............

e, couche corticale externe ; 1, leucocytes ; t, trabécules de tissu
conjonctif; ed, endothélium.{(Oc. comp. 4. S.hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— 5. Coupe transversale par l'intestin moyen................

i, intestin moyen; pancr, tissu conjonctif renfermant les tubules
pancréatiques ; par. l, rate accessoire (paralien). Coloration par
lhématoxyline et van Gieson (Oc. I. Sa, Zeiss).

— 6. Coupe Warsversale bar FéAOMAE..,.,.............. Ë

m. m, fibres de la muscularis mucosæ ; m1.e, couche musculaire
externe (longitudinale) ; #1. :, couche musculaire interne (circulaire);
g, couche glandulaire. Coloration par l'hématoxyline et van Gieson.
(Oc. I, Sa: Zeiss).

— 7. Partie d'une coupe transversale par la paroi stomacale..

mm, fibres de la muscularis mucosæ ; m.e, couche musculaire externe :
m.i, couche musculaire interne. Coloration par l’hématoxyline

et van Gieson. (Oc. 4. S. AA. Zeiss).
— 8. Partie d’une coupe transversale par le pancréas et les

Cordons AREAS DES à si
t. p, tubules pancréatiques ; c. L, cordons de Langerhans. (Oc. 4.
S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— 9. Partie d’une coupe transversale par l'intestin moyen (i),

la rate (r), le pancréas {f. p.) et l'estomac (e).........
(Oc. I. Sa Zeiss).

Pages

29

30

35

33

33

27

27

32

32

POISSONS (aNAT COMP) (11), PL. 1

ALBERT I PRINCE pE MONACO, CAMPSCIENT

-7TTLTIL.

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Firenze Lit. A Ruffoni, Piazza S.Croce 20

DIGESTIF

CANAL

1-15 GASTROS

JNusbsum-Hilarowiez del.et pinx.

OMUS BAIRDI

LÉGENDE DE LA PLANCHE IV (suite)

Fig. 10. Coupe transversale par la partie initiale du duodénum..
i. p, intestin pylorique (duodénum) ; mm, muscularis mucosæ ; m.e,

couche externe de la muscularis ; m. i, couche interne de la muscu-
laris. (Oc. 4. S. AA. Zeiss),

— II. Partie d’une coupe transversale par la paroi stomacale...

g, couche glandulaire ; mm, muscularis mucosæ ; m. e, couche
externe de la muscularis ; m. #, couche interne de la muscularis ;
y, vaisseaux sanguins. Coloration par l’hématoxyline-éosine. (Oc.
4. S. AA. Zeiss).

— 12. Partie d’une coupe transversale par la paroi du rectum...

m, fibres musculaires ; p, cellules pigmentaires. Coloration par l’héma-
toxyline ferrique de Heidenhain et l'orange. (Oc. 4. S. hom. imm.
1/12 Zeiss).

— 13. Partie d’une coupe transversale par la paroi de l'intestin
MOVE rue ss a a a
Signification des lettres comme sur la fig. 12. (Oc. 4. S. hom. imm.

1/2 Zeiss).
— 14. Partie d’une coupe transversale par l'épithélium stomacal
BC SRE en ur eeepc: Fe

(Oc. 4. S. hom. imm. 1/2 Zeiss).

— 15. Partie d’une coupe transversale par le pancréas.........
t. p, tubules pancréatiques glandulaires ; c. p. p, conduit pancréatique
principal ; c. p, conduits pancréatiques secondaires. (Oc. 2. S. AA.

Zeiss).

Pages
29

28

31

31

24

32

LÉGENDE DE LA PLANCHE V

Canal digestif de Gastrostomus Bairdi (fig. 1 à 4)
et de Melamphaes mizolepis (fig. $ à 19).

Pages
Fee Partie d’une coupe transversale par la paroi stomacale

CROSS 28

g, couche glandulaire; mm, muscularis mucosæ ; m. e, m. i, couche
externe et interne de la muscularis ; #1. s, couche de fibres mvus-
culaires striées; p, cellules pigmentaires. Coloration par l’héma-
toxyline ferrique et l'orange. (Oc. 6. S. AA. Zeiss).

— 24. Fibres musculaires lisses de la paroi stomacale de Gas-
trostomus ; fig. 2, 3, coupe longitudinale ; fig. 4, trans-
vérsale.... a EE : - 30
Fig. 2 et 4 colorées par l’hématoxyline et l’éosine, Fig. 3 colorée par
l’'hématoxyline et van Gieson; fibre musculaire jaune, tissu con-
jonctif rouge. (Oc. comp. 6. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— 5. Partie d'une coupe transversale par l’épithélium et la

couche glandulaire de l'estomac de Melamphaes...... 24
c. p, conduit glandulaire principal ; tt. g, tubules glandulaires
sécrétoires. Coloration par l’hématoxyline de Krüger, tissu conjonctif
brunâtre (Oc. I. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— 6. Coupe longitudinale par la partie distale de la glande
sotnaeaie de Mo phare 7... _
(Oc. comp. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— 7. Partie d'une coupe longitudinale par l'estomac, l'intestin
pylorique et les annexes de A/elamphaes............. 34,

g. f, glandes stomacales du « fundus »; g. p, glandes stomacales

pyloriques ; 1. p, intestin pylorique [duodénum) ; p, pancréas:

s, sphincter ; a. p, appendices pyloriques ; à. m, intestin moyen.

Coloration par l’hématoxyline et l’éosine.(Oc. comp. 4. Sa: Zeiss).

— 8. Partie d'une coupe transversale par l’œsophage de
Melamphaes ....... ne . EE . er en

m, fibres musculaires ; l, leucocytes ; v, vaisseaux sanguins. Colo-

ration par l’hématoxyline et l’éosine. (Oc. 6. S. AA. Zeiss).

— 0. Partie d’une coupe transversale par le rectum de Melam-

A . A 38

m. e, m. 1, couche externe et interne de la musculature. (Oc. 6. S.
AA. Zeiss).

6

ar

ALBERT I PRINCE DE MONACO, CAMPSCIENT

POISSONS (ANAT COMP) (11), PL.v

LIPE

F2ISIIDE

7
LT?

J.Nusbaum-Hilarowiez ad nat.del.et pinx.

CANALMSESTIF.
1-4 GASTROSTOMUS BAIRD! :

À MELAMPHAES MIZOLEPIS..

Firenze Lit. A Ruffoni, Piazza S.Croce 20

Fig.

ms

LÉGENDE DE LA PLANCHE V (suite)

Pages
10 à 14. Portions de coupes transversales par le foie de Melam-
ST a SE — :
c, cellules cyanophiles ; c. b, conduits biliaires ; y, vaisseaux san-
guins ; e, érythrocytes ; eb, érythroblastes ; fc, tissu conjonctif.
Coloration par l’hématoxyline et l’éosine. (Oc. comp. 6. S. hom.
imm. 2 mm. Zeiss).
15 à 18. Epithélium intestinal de Melamphaes ................
Coloration par l’hématoxyline et l’éosine. (Oc. comp. 6. S. hom.
imm, 2 mm. Zeiss).
… 35

19. Epithélium stomacal de Melamphaes............ k
(Oc, comp. 6. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

LR SSL LL SL SL ot

Fig. 1à10.

— 17 à 19.

— 22 à 24.

LÉGENDE DE LA PLANCHE VI

Bathymyxium piscium, parasite intestinal (fig. 1 à 16).

Différentes phases de multiplication de Bathymyxium

(dans l'intestin de Melamphaes) FT Re
(Oc. comp. 8 S. hom. imm. 2mm., long. tube 200, Zeiss).

Différentes phases de sporulation de Bathymyxium (de
l'intestin de Melamphaes et de Siomias)..............

e, cellules épithéliales de l'intestin ; s, spore; m, membrane du
sporocyste ; #, noyau ; les fig. 13-16 sont colorées par le liquide
de Biondi-Heidenhain ; les autres par l’hématoxyline et l’éosine.
Les fig. 14 et 15 représentent des coupes transversales par un
sporocyste.

Canal digestif de Stomias boa (fig. 17 à 29).

Coupes transversales par la couche épithéliale dans diffé-

rentes parties de la paroi stomacale de Sfomias.......
Colorées par l’hématoxyline et l’éosine. (Oc. 6. S. hom. imm. 2 mm.
Zeiss).

Coupe transversale par l’œsophage et les annexes de
DLOMLLAS ere E
p, plis de la muqueuse ; m1. c, fibres musculaires circulaires ; m. I,
fibres musculaires longitudinales ; h, foie. (Oc. 4. Sa, Zeiss).
Fibres musculaires longitudinales avec enveloppes pig-
mentaires de la paroi œsophagienne de Siomias .

p, cellules pigmentaires. (Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

8 + ee + »

Coupes transversales par l'æœsophage ou par la partie
ventrale (fig. 23, 24) de celui-ci avec les annexes de
SO PEL Ste ne 0 :

0, œsophage; f, foie; y. f, vésicule biliaire ; t, glande sous-œæsopha-
phagienne (thyroïde ?}. (Oc. I. Sa Zeiss).

Coupe transversale par l'estomac {s), l'intestin pylorique
(d), l'intestin moyen (1) et le pancréas (p) de Stomias...

g, glandes stomacales. (Oc. comp. 4. Sa; Zeiss).

Pages

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47

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Firenze Lit. À Ruffoni, Piazza S.Croce 20
J.Nusbaum-Hilarowiez ad nat.del. et pinx.

BATHYMYXIUM, PARASITENIESTINAL, GANAL DIGESTIF
1-16 BATHYMYXIUS "29 STOMIAS BOA

Fig.

LÉGENDE DE LA PLANCHE VI (suite)

26. Partie d’une coupe transversale par la glande sous-œs0o-

phagienne (thyroïde ?) de Stomias ..... . …

t, tubules glandulaires ; c, cordons glandulaires solides ; Z, leucocytes;

s, substance sécrétée ; y, vaisseaux sanguins; p, cellules pig-
mentaires. (Oc. 2. S. C. Zeiss).

07. Petite partie d'une coupe transversale par la glande sous-

œsophagienne de Stomias............ ns ee

Pages

4

45

e, épithélium d’un tube glandulaire; c, capillaires sanguins; Le,

leucocytes éosinophiles ; {, petits leucocytes. (Oc. 3-4. S. hom.
imm. 1/12 Zeiss).
28. Epithélium d’un tube glandulaire de la glande sous-

œsophagienne de Siomias....... EE . ee
e, cellules épithéliales ; c, cils: s, substance sécrétée. (Oc. comp. 6.8.

hom, imm. 2mm. Zeiss).
29. Coupe par un cordon épithélial glandulaire de la glande

SOUS -ŒSOPRATIÉNNE QE DOM. sus semer er + +
€, capillaire sanguin ; e, épithélium ; /, leucocytes. (Oc. comp.6 8.
hom. imm. 2mm. Zeiss).

45

LÉGENDE DE LA PLANCHE VII

Canal digestif de Stomias boa (fig. r à 13), pancréas de Gastrostomus (fig. 14).
| Pages
Ru Coupe transversale par les conduits hépatique et cystique
RÉ D 50
d. hep, conduit hépatique ; d. cyst, conduit cystique ; "1, fibres mus-
culaires. (Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— 2. Partie d’une coupe transversale par la paroi : conduit
cystique de Siomias................................ 50
(Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— ÿ. Epithélium de la vésicule biliaire, vu de la face interne
(À) et partie d'une coupe transversale par la paroi de
la vésicule biliaire{B) de Stomias..... RE = 59
(Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— . 4. Partie d’une coupe transversale par le foie de Stomias... 50
(Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— 5. Partie d’une coupe transversale par la partie postérieure

de l'estomac de Siomias............ Re 49
g, glandes ; », capillaires sanguins ; p, couche pigmentaire ; m1. t,
m.e, couches musculaires interne et externe. (Oc. 3-4. S. DD. Zeiss).
— 6à0. Portions de coupes par la paroi stomacale de Siomias... 48
La fig. 7 est colorée par le triacide d'Ehrlich-Biondi-Heidenhain,
les autres figures sont colorées par l’hématoxyline et l’éosine.
(Fig. 6. Oc. comp. 6. S. hom. imm. 2mm. Zeiss; Fig. 7. Oc. 3-4,
S. hom. imm. 2 mm. Zeiss; Fig. 8-9 Oc. comp. 6. S..hom. imm.
2 mm. Zeiss).
— 10. Partie d’une coupe par un tubule pancréatique (4) et une
cellule pancréatique coupée {B) de Siomias...... ie
(Oc. comp. 6. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— Il. Partie d'une coupe transversale par la paroi de l'intestin

pylorique de Siomias......... . 50

Coloration par l’hématoxyline et Déosise: e, épithélium ; f. c, tissu

conjonctif; m,couche musculaire. (Oc. 4.S.hom. imm. 2mm. Zeiss).

— 12, 15. Parties de coupes transversales par la paroi de l'intestin
moyen de Sfomias ................ 51

Coloration par l’hématoxyline et l’éosine. m, couches musculaires.

(Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— 14. Partie d'une coupe transversale par le pancréas de Gas-

trostomus ...... SR — 32
(Oc. 2. S. DD. Zeiss).

POISSONS (ANAT COMP) (1), PL VII

ALBERT I PRINCE pe MONACO, CAMPSCIENT

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1-13 STOMIAS BOAÀ, 14 CASTROSTOMUS BAIRDI

JNusbaum-Hilarowicz ad nat.del. etpinx.

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LÉGENDE DE LA PLANCHE VIII

Squelette et myologie de Gastrostomus Bairdi (fig. r à r6]).

Pages
te +, ÉÉ Ch Lee Venmirale 5 ee a 54
— 2. Lécrèns, face dofoale 50 5: re 54
A, alisphenoideum ; B, basisphenoideum ; Æ, ethmoidale (mediale);
ÆE L, ethmoidale laterale ; F, frontale ; A, hyomandibulare ; L, occi-
pitale laterale; AN, nasale; O, occipitale (basioccipitale) ; Op.
opisthooticum ; Or, orbitosphenoideum ; P, prooticum ; Pa, parie-
tale ; s, sphenoticum ; V, vomer.
— 3. Le crâne et les deux premières vertèbres du côté latéral. 54
Photographie, X environ 3,5.
= 4, 5, BÉS NORD CON O 58
n, neurapophyses ; #, hémapophyses ; /, lamelles triangulaires.
— 6. Photographie du crâne avec le suspenseur du côté ventral
TE 56

H, hyomandibulare ; /, ligamentum cranio-maxillare ; Ad, mandi-
bula ; Mx, maxilla, Q, quadratum; F. S, musculus depressor
mandibulæ ; F. m, levator mandibulæ.

— 7. PA tte VU A COR VOA NT S . .. . 55
a, b, c, musculus levator mandibulæ (coupé); M. À, musculi adduc-
tores hyomandibularis.

— 8. La tête avec le suspenseur. La peau est écartée, les muscles

SOL NS A 27
ar, articulatio quadrato-mandibularis; hb, hyomandibulare ; y, liga-
mentum cranio-maxillare; md, mandibula; mx, maxilla; mit,
musculus transversus capitis ; m1. r.c, m. rectus capitis posticus ;
m.t.s, m. depressor mandibulæ ; m. t. i, musculus levator man-
dibulæ ; v. d, muscles du tronc; t, tendon du m. levator mandi-
bulæ ; qu, quadratum.

— 9. Eatête vue du Côté dorsal, >< environ 2,3........ se D)
L, ligamentum cranio-maxillare; M, maxilla; Æ, musculus levator
mandibulæ ; À, cavité buccale.

— 10. Musculature cranio-mandibulaire (grossie)..... ee 56
A, musculus levator mandibulæ ; D, troisième tête du m. levator
mandibulæ ; Æ, maxilla ; A7, hyÿomandibulare ; L. M, depressor
mandibulæ ; ZL, ligamentum musculi depressoris mandibulæ ;
M, capsule articulaire quadrato-hyomandibulaire ; Q, quadratum;
R, mandibula ; W, branche musculaire du m. levator mandibulæ
et W”, son ligament.

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J'Nusbaum-Hilarowiez

, MYOLOGIE

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SQUELET'R

[OMUS BAIRDI

LÉGENDE DE LA PLANCHE VII (suite)

Pages

Fi TE La tête, la musculature de celle-ci et de la colonne ver-
tébrale vue du côté dorsal, >< environ 2....... a serie 01

m. t, musculus transversus capitis (coupé) ; m. r. c, m. rectus capitis

posticus ; £. p, m. depressor mandibulæ ; d.», muscles du tronc

(dorsaux et ventraux).

— 12, 13. Coupes transversales par l'organe de l'extrémité de la

RL 58

c, cartilage ; o, prolongement de la colonne vertébrale ; y, vaisseaux
sanguins ; p, pigment. Fig. 12, coupe d’une région plus antérieure,
fig. 13, coupe d’une région plus postérieure. (Fig. 12, Oc. 4. Sa,
Zeiss. Fig. 13, Oc. 2, S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— I4€t 17. Coupes transversales par le tronc. Fig. 14, dans la région

antérieure du corps; fig. 17, dans la région de la queue. 63

d. y, y’ m, muscles longitudinaux ; ch, corde dorsale : n, moelle épi-
nière ; n’, troncs nerveux ; €, cartilage ; y. s, vaisseaux sanguins ;
l, cavités Iymphatiques. (Oc,. 4. Sa, Zeiss).

— 15. Le tronc coupé transversalement (région moyenne du
a ee

m, muscles; Ps, processus spinosus ; c. a, canalis vertebralis ; W,
vertèbres ; R, moelle épinière ; À, cavités lymphatiques.
— 16. Partie d'une coupe transversale par la colonne vertébrale. 63

e, elastica chordæ ; ch, tissu de la corde dorsale ; n. a, neurapophyse.
(bleu cartilage,rouge tissu osseux). {(Oc. 4. S.hom. imrn. 2 mm. Zeiss).

RD Re ee tee ee » 2.

LÉGENDE DE LA PLANCHE IX

Système nerveux et organes respiratoires de Gastrostomus Bairdi {fig. r à 22).
| Pages
Fig. 1. = Nerfs crâniens (le cerveau et les contours du crâne sont
RATS ETS un eu es SE 69

0, nervus olfactorius; P. n, opticus ; B, n, oculomotorius; D, Trois
branches du n. trijumeau ; R, ramus maxillaris trigemini; À, n.
acusticus ; Æ, n. facialis; Af, ramus mandibularis trigemini ;
W, n. vagus.
— 2à5. Cerveau vu du côté dorsal (2), du côté ventral (3) et du
côté latéral (5); coupe sagittale (4) par le cerveau, % en-
viron 9-10 ...... ee + + © + © «+ ee. + + + 6e @e + + + + « « + « CE EE Er 69
L, lobi olfactorii ; 0, n. optici, 1, telencephalon; 2, diencephalon ;
3, mesencephalon ; AH, hypophyse ; 4, metencephalon; 5, myen-

cephalon.
— 6ari. Coupes transversales par diverses parties du cerveau (voir
RO a à ee ee. En ao 09

(Oc. 2. S. AA. Zeiss).

— 12. Coupe transversale par la glande thyroïde... ... ee — 0ù

I, vésicules glandulaires ; G, vaisseaux sanguins. (Oc. 6. S. 16mm.
Ap. O,. 30. Zeiss).

— 13. Branchies (B) et fentes branchiales (O) internes, >< en-
64
— 14. Coupe transversale par la lamelle branchiale....... sr + DO

p, cellules qui forment les parois des capillaires sanguins (Pilaster-
zellen) ; e, 1, couche épithéliale externe et interne; c, cellules de
tissu conjonctif. (Oc. 8. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— 15. Gastrosiomus avec la cavité branchiale ouverte, préparée,
Re er 65

K, branchies; K. O, fente branchiale externe ; 4, œil.

— 16, 17. Coupes transversales par la cavité branchiale......... = -0)

Microphotographies. X< environ 13. b, branchies, a, arc branchial
(cartilagineux); s, fente branchiale interne; ph, pharynx; s,sphincter.

— 18. Coupe transversale par la cavité branchiale............. 66

d, diverticule du pharynx ; Æ, branchies ; m, muscles ; P; paroi
externe de la cavité branchiale ; p’, paroi externe du diverticule
pharyngien; o, partie d’une fente branchiale interne ; t, thyroïde.
(Oc. 2. S. a: Zeiss).

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ALBERT I PRINCE DE MONACO, CAMPSCIENT.

POISSONS (Anar COMR) (Hi), PL.IX

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GASTROS®E
1-22 ORGANES RESPIRAT

Frenze Lit. À Ruffoni, Piazza S Croce 20

LÉGENDE DE LA PLANCHE IK (suite)

Pages
Fig. 19à 21. Coupes longitudinales (19) et transversales (20-21) par le

tronc branchial principal...... ee ” 65
B, lamelle branchiale ; X, cartilage central; G, vaisseaux sanguins.
Fig. 20, près de la base, fig. 21, près du sommet. (Oc. 2. S. 16 mm.
Ap. 0,30. Zeiss).
— 22. Photographie de branchies (de profil et un peu de face),
he - . 4

LÉGENDE DE LA PLANCHE X

Organes sexuels féminins du Gastrostomus Bairdi (fig. 1 à 4),
lamelle branchiale de Cyema atrum (g. 11),

canal digestif de Cyema atrum (fig. 5 à 10) etde Gonostoma grande (fig. 12 à 18).

Coupe transversale par une petite partie d'ovaire du
ÉTEINT RE ee Fe
æ, œuf; e.f, épithélium folliculaire ; ee, épithélium externe de la
paroi ovarienne ; e.t, épithélium interne de la paroi ovarienne ;

y, vaisseau sanguin. (Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
Coupe transversale par la partie dorsale du corps de
GASIFOSIOMMUS sr. EE — -
e, estomac ; î, intestin; f, foie; m, muscle impair longitudinal;
m. s, mésentère ; 0, ovaire ; p, paroi du corps; r, rein. (Oc. 2.

Sa: Zeiss).

Coupe transversale par l’oviducte d’un jeune exemplaire
ER TE =
Coloration par l’hématoxyline de Delafield et Van Gieson. e, épi-
thélium ; £. c, tissu conjonctif; c, capillaires. (Oc. 4. S. DD. Zeiss).
Les organes sexuels féminins de Gastrostomus (individu
OR TE a sn 2 .

e, ovaire ; od, oviducte ; 7, rectum; p, peau.

Coupes transversales par l'estomac (5) et le duodénum (6)
CÉSAR SR ais A
g, glandes stomacales ; m.{l, muscles longitudinaux ; m. c, muscles

circulaires. (Oc. 2. S. AA. Zeiss).
Coupe longitudinale par la paroi œsophagienne de Cyema
dairum...... a à a a
gm, glandes muqueuses ; g.s, glandes séreuses ; s. c, stratum com-
pactum ; #1. l, muscles longitudinaux ; 17. c, muscles circulaires.

(Oc. 3-4 S. DD. Zeiss),

Coupe longitudinale par la paroi intestinale de Cyema
CNT es RS

(Oc. comp. 8, S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

Pages

71

72

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POISSONS (ANAT COMP) (11), PL.X

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SIRANCHIES, CANAL DIGESTIF

ATRUM. 12-18 GONOSTOMA GRANDE.

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ORGANES SEXUELS FEM
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1-4 GASTROSTOMUS BAIRDI. 5-11 CYE

LÉGENDE DE LA PLANCHE X (suite)

Fig. 9,10. Coupes longitudinales, par la paroi stomacale (9, région
plus antérieure, 10, région plus postérieure) de Cyema

EURE vesrensi ssh EE

m, fibres musculaires ; g, glandes stomacales ; c. g, conduit glan-

dulaire. (Oc. 2. S. DD. Zeiss).
Coupe transversale par une partie de la lamelle branchiale
de Cyéma atrum...... ER
e, épithélium externe ; 1, épithélium interne ; p, Pilasterzellen ; c,
capillaire sanguin. (Oc. 2. S. DD. Zeiss).
— 12. Coupe transversale par la paroi œsophagienne de Gonos-
A

e, épithélium ; s. c, stratum compactum ; "1. c, muscles circulaires
et obliques. (O0. 2. S. DD. Zeiss).

— 13. Passage de l’épithélium formé de plusieurs couches cel-
Julaires en un épithélium formé d’une seule couche ;
RSODHSE dé CONOSIONI PÉANAE es een eu:

(Oc. 6. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— 14. Coupe transversale par la partie gauche de l'estomac de
COS RU Or aer nt + = =

Coloration par l’hématoxyline de Delafield et Van Gieson. e, épi-
thélium ; £. €, tissu conjonctif compact sous-épithélial ; g, glandes
stomacales ; p, pigment; mn. s, muscles striés ; m.c, muscles cir-
culaires lisses ; m. l, muscles longitudinaux lisses. (Oc. comp. 8,S.
AA. Zeiss).

— 15. Coupe transversale par un groupe de glandes stomacales

de Gonostoma grande....... D —

c. h, cellules épithéliales très hautes ; e, t, c, épaississement formé
de tissu conjonctif fibrillaire sous-épithélial ; mm, fibres de la
muscularis mucosæ ; c, conduit de la glande stomacale ; g/, parties
sécrétoires de glandes stomacales ; y, capillaires sanguins ; p, pig-
ment. (Oc. comp. 8. S. DD. Zeiss).

— 16. Partie d'une coupe transversale par le tissu conjonctif
fibrillaire sous-épithélial et les glandes stomacales envi-
ronnantes de Gonostoma grande, avec une formation

énigmatique {f. e.}, probablement un parasite, muni

d’une capsule formée de tissu conjonctif fibrillaire (s.)..

m, fibres musculaires dans le tissu conjonctif fibrillaire sous-épi-
thélial. (Oc. comp. 8. S. DD. Zeiss).

— 17, 18. Coupe transversale par le pancréas de Gonostoma grande.
a, appendice pylorique; p, tissu pancréatique ; L, cordons épithéliaux
de Langerhans. (Fig. 17. Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss; Fig. 18.

Oc. 8. S. AA. Zeiss).

Pages

78

19

80

80

SI

8I

LÉGENDE DE LA PLANCHE XI

Organes photodotiques de Stomias boa (fig. 1 à 10);

l’épithélium externe de la peau manque partout.
Pages
Fig. +, Coupe longitudinale par le renflement terminal, par une
partie du pédoncule (tige) et par les parties basales de
deux filaments terminaux du barbillon de Sfomias.... 86

Coloration par l’hématoxyline et l’éosine. c, corium ; f, filament ter-
minal; n, nerf; g, glande principale du renflement terminal ;
g’, glandes du pédoncule; g” glandes des filaments terminaux ;
p, pigment; », vaisseaux sanguins. (Oc. 8. S. AA. Zeiss).

— 2. Partie d'une coupe transversale par le renflement terminal
du barbillon de Siomias......... EE un. 0

Coloration par l’hématoxyline ferrique de Heidenhain et l’éosine.
e, épithélium de la glande principale ; n, nerf; y, vaisseau sanguin
dans le tissu conjonctif fibrillaire en dehors de la glande ; ft, tissu
conjonctif fibrillaire avec les nerfs et vaisseaux sanguins au centre
de la glande. (Oc. 4. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— 3. Coupe longitudinale par une partie du pédoncule (tige)
du barbillon de Sfomias......... Re ss — 07

Coloration par l’hématoxyline et l’éosine. g, glande principale du
renflement terminal; g’, glandes du pédoncule ; n,nerf; y, vaisseau
sanguin. (Oc. 2. S. AA. Zeiss).

— 4. Coupe transversale par un seul filament terminal du
barbihon_ de S'omnas.:........ a A

Coloration par le triacide d'Ehrlich-Biondi-Heidenhain. g, glande ;
n, nerf; y, vaisseau sanguin. (Oc. 8, S. AA. Zeiss).

— 5. Partie d'une coupe transversale par les glandes du
pédoncule (tige) du barbillon de Sfomias.............. 88

Coloration par le triacide d’Ehrlich-Biondi-Heindenhain ; g, parties
de glandes; s, cloisons dans le corium ; n, nerf; y, vaisseau
sanguin (capillaire). (Oc. 8. S. hom. imm. 2 mm Zeiss).

— 6. Coupe transversale par les glandes du filament terminal

dubarbillon de Sfomias, ........:. A a D,

Coloration par le triacide d'Ehrlich-Biondi-Heidenhain. g, glande ;
s, cloisons dans le corium ; #, nerf; p, pigment. (Oc. 8. S. hom.
imm. 2 mm. Zeiss).

A

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POISSONS (ANAT COMP) (1), PL.XI

O, CAMPESCIENT.

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Firenze Lit. A Ruffoni Piazze S Croce 20

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110 ORGANES PHOTO

QUES DE STOMIAS BOA

LÉGENDE DE LA PLANCHE XI (suite)

te 7 Coupe transversale par la partie centrale du pédoncule

ESS BÉDITIOEUS SORTE... ... .
Coloration par le triacide d'Ehrlich-Biondi-Heidenhain. c, corium ;
g, glande ; n, nerf; p, nerf et vaisseau sanguin pénétrant dans
chaque glande ; s, cloisons dans le corium. (Oc. 8. S. AA. Zeiss).
— 8. Coupe transversale par le renflement terminal du bar-

billon de S'onmmas "5... Se
Coloration par . ferrique de Heidenhain et l'évsine,

gg’, glandes ; n, nerf; y, vaisseaux sanguins ; le tissu conjonctif

fibrillaire est rouge. (Oc. 2. S. DD. Zeiss).
— 9. Partie d’une coupe longitudinale par le tissu pseudo-
cartilagineux dans la partie basale du pédoncule du

barbillon de Stomias..... A
Coloration par l’hématoxyline et l'éosine. (Oc. 2. S. hom. imm. 2 mm.

Zeiss).
— 10. Deux vaisseaux sanguins (coupés) avec une partie de tissu
conjonctif fibrillaire lâche, dans le du bar-

billon de Siomias..... EE — = nn.

Coloration par la résorcine-fuchsine de Weigert{les fibrilles élastiques
sont colorées en violet-noirâtre). e, érythrocytes. {(Oc. 8, S. hom.
imm. 2 mm. Zeiss).

Pages

87

87

87

87

LÉGENDE DE LA PLANCHE XII

Organes photodotiques de Stomias boa (fig. 1 à 6, 8 à 71)
et de Photostomias Güernei (fig. 7).

Eee — Coupe par l'organe photodotique en forme de bouteille,

de la ligne ventrale du tronc chez Sfomias......... rs ol

c, cellules centrales du cristallin (lentille); g, corps gélatineux ;
gl, cellules glandulaires ; p, pigment; s, cloisons ; r, réflecteur ;
t. c, tissu conjonctif. (Oc. 4. S. C, Zeiss).

— 2. Coupe par l'organe photodotique en forme de bouteille
de la ligne ventro-latérale du tronc chez Siomas...... 03
Signification des lettres comme dans la fig. 1 (Oc\4. S. C. Zeiss).
— 3à6. _ Coupes par les organes photodotiques caliciformes chez
SION IAE ES PRE ss Sida ee 93
ce, cellules centrales ; gl, cellules glandulaires (Oc. 4. S. DD. Zeiss).
—. 7. Coupe par l’organe photodotique en forme de bouteille
de la ligne latéro-ventrale du tronc, chez Photostomias
CR ee 94

c, celiules centrales ; g, corps gélatineux ; gl, cellules glandulaires ;
l, cristallin ; r, réflecteur. (Oc. 8. S. DD. Zeiss).

— 8. Cellules glandulaires d’organe photodotique de la ligne

SÉNO ACER lee OMR em 4 1 O1

Coloration par le triacide d'Ehrlich-Biondi-Heidenhain. (Oc. 8. S.
hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— 9. Cellules périphériques du cristallin d’organe photodotique
de la ligne ventrale chez Sfomias...... A 92
(Oc. 8. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).
— IO. Cellules centrales du cristallin d’organe photodotique de
Hi lone ventrale chez SoHo. 1... 92

(Oc. 8. S. hom. imm. 2 mm. Zeiss).

— II. Éartéte US ons DO ES 2 5. ee 84

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