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Atlas deutscher Meeresalgen.

Im Auftrage des Königlich Preussischen Ministeriums für Landwirthschaft, Domänen und Forsten
herausgegeben ım Interesse der Fischerei

von der

Kommission zur wissenschaftlichen Untersuchung
der deutschen Meere.

Erstes Heft. Tafel 1 bis 3.

Im Verbiandune mit Dr? E Searinr und P- Kouckvck

bearbeitet von

Dr] REINER.

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Vorbemerkung zum ersten Hefte.

Die in vorliegendem Hefte gebotene Darstellung von Meeresalgen will keine mono-
graphische Behandlung der Arten liefern. Ihr Anspruch ist ein bescheidenerer; es soll gerade
durch diese Abbildungen und die mit ihnen verbundenen kurzen Diagnosen zu eingehenderer
monographischer Bearbeitung der Algen Anregung und Anstoss gegeben werden.

Wenn ich in dem ersten Hefte hauptsächlich solche Gattungen berücksichtigt habe, welche
ich bei meiner Durchforschung der westlichen Ostsee neu entdeckte, so dürfte dies den Botanikern
kaum unwillkommen sein, da von diesen Formen bislang noch keine Abbildungen existiren.
Bezüglich der Characteristik und Synonymie dieser Pflanzen, von welchen der Atlas nur kurze
Diagnosen bringt, sei hier ein für alle Mal auf die Bemerkungen in meiner Algenflora der

westlichen Ostsee deutschen Antheils (Berlin 1889) verwiesen.

ISREINKE

Inhalfvon

Ic 1

Halothrix lumbricalis KÜTZ. sp.
SYMPDHOHICEOGLUS: Kahans Bee 2 nn...
Kjellmania sorifera RKE.

Asperococcus echinatus MERT. sp. var. filiformis RKE.

Ralfsıa verrucosa ARESCH.

Ralfsia clavata CARM. Sp.

Mierospongüum gelatinosum RKE.

Migrospongium gelatinosum RKE.

Leptonema fasciculatum RKE. var. uncinatum
Leptonema fasciculatum RKE. var. majus
Leptonema fasciculatum RKE. var. flagellare
Desmotrichum undulatım ). AG. sp.
Desmotrichum balticum KÜTZ.

Desmotrichum scopulorum RKE.

Scytosiphon pygmaeus RKE.

Ascocychus reptans CR. sp.

Ascocychus ocellatus KÜTZ. sp.

Ascocyclus balticus RKE. :
Ascocyclus foecundus STRÖMF. sp. var. serzatus RKE.
Ascocyclus globosus RKE. :

Ectocarpus sphaericus DERE. u. SOL. sp.
Ectocarpus Stilophorae CR.

Ectocarpus repens RKE. u ee
Ectocarpus ovatus IJELLM. var. arachnoideus RKE.
Rhodochorton chantransioides RKE. -
Antithammion boreale GOBI var balticum RKE.
Blastophysa rhisopus RKE.

Epicladia Flustrae RKE.

Cladophora pygmaea RKE.

Pringsheimia scutata RKE.

Tafel

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Genus Halothrıx Re.

Zu Büscheln vereinigte Zellfäden, welche im oberen Theile ganz einfach sind, dicht über der Basis sich
mehr oder weniger lebhaft verzweigen; ein Theil dieser Aeste bildet wiederholt verzweigte Kurztriebe. Das
Wachsthum der Fäden vollzieht sich durch intercalare, basipetal erlöschende Zelltheilung, die oberen Glieder der
Fäden sind daher länger als die unteren: die lebhafteste Zellenvermehrung findet etwas oberhalb der Basis statt.
In den Zellen bemerkt man zahlreiche kleine plattenförmige Chromatophoren von etwas unregelmässigem Umriss.
Am mittleren und oberen Theile der langen Assimilationsfäden entwickeln sich pluriloculäre Zoosporangien.
Dieselben bilden krustenförmige Sori an der Oberfläche der Fäden, welche zonenweise die letzteren einhüllen. Die
Fadenzellen, welche Sori tragen, theilen sich auch im Innern durch verschieden gerichtete Wände in mehr oder
weniger zahlreiche Kammern. Aus den kleineren, peripherisch gelegenen Theilzellen wachsen die Sporangien hervor.
deren Längsaxe senkrecht zur Fadenaxe steht; sie durchbrechen die äusseren Membranschichten der Mutterzelle.
Die Sporangien enthalten 4 bis 6 Fächer, meistens in eine Reihe geordnet, in jedem Fache eine Zoospore ; die
Oeffnung findet am Scheitel statt. Uniloculäre Sporangien unbekannt.

Halothrix lumbricalis Kürz. sp.
Bildet 5 bis 20 Millimeter hohe Büschel von hellgelber Farbe. Assimilationsfäden im oberen Theile 20
bis 40 Mikren dick; die Zellen sind meist doppelt so lang als breit, an der Basis isodiametrisch.
Vorkommen. Auf alten Zoszera-Blättern in der westlichen Ostsee; im Frühling.

Erklärung der Abbildungen.
Gezeichnet von Dr. F. SCHÜTT.

Fig. 1. Einige Büschel der Pflanze auf einem Zoszera-Blatte. (4).

Fig. 2. Stück des basalen Theiles eines Büschels mit einem fertilen Assimilationsfaden; s Sori. (179),

Fig. 3a. Zwei jüngere Zellen eines Assimilationsfadens mit Chromatophoren. (1299).

Fig. 3b. Schichtung der Wand einer sehr alten Zelle. (1299),

Fig. 4. Stück eines fertilen Assimilationsfadens, im unteren Theile ausgebildete Sori, bei v die Anlage
der Sporangial-Mutterzellen. Im oberen Theile die ersten Quer- und Längstheilungen der Zellen, welche der
Bildung der Sori vorausgehen. (*2°).

Fig. 5. Quer- und Längstheilungen in einer Gliederzelle. an deren Oberfläche sich später ein Sorus
entwickelt; optischer Längsschnitt. (629).

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Anlage der Sporangial-Mutterzellen; optischer Längsschnitt. (62°).

7. Zelle mit nur zwei Sporangien; optischer Längsschnitt. (2°).

Fig. 8. Zelle mit vollständigem, noch in der Entwicklung begriffenen Sorus; optischer Längsschnitt. (62°).
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Fig.

Fig Zelle mit partialem Sorus, zwei Sporangien entleert; optischer Längsschnitt. (92°).

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Genus Symphoricoccus Rkr.

Büschelige, an der Basis verzweigte, einreihige Assimilationsfäden mit intercalarer, basipetal erlöschender
Zelltheilung; dieselben können im oberen Theile einfach bleiben oder hier und da einen Seitenast aussenden. Aus
der Basis des Büschels entspringen gegliederte Wurzelhaare. An einzelnen niederliegenden Assimilationsfäden, die
sich wie Ausläufer verhalten, können aus einer das Substrat berührenden Zelle durch Entwicklung von Wurzel-
haaren nach Unten und Assimilationsfäden nach Oben secundäre Büschel der Pflanze hervorspriessen. Chromato-
phoren kleine Platten von unregelmässigem Umriss, mehr oder weniger zahlreich in einer Zelle, was von deren
Länge abhängt. Uniloculäre Zoosporangien meist gehäuft, besonders an der Basis der Fäden, aber auch an deren
mittlerem Theile stehend, in der Regel ungestielt, selten mit einzelligem Stiel versehen. In den Sporangien bilden
sich zahlreiche Zoosporen, welche aus einer apicalen Oeffnung der Hülle entweichen. Unterhalb der sitzenden
Sporangien werden durch eine uhrglasförmige Wand kleine, mit dichtem Plasma erfüllte Zellen aus den Fadenzellen
herausgeschnitten, die Ersatzzellen genannt sein mögen; ihre Bedeutung besteht darin, dass dieselben nach Ent-
leerung der primären Sporangien in deren Hülle hinein zu secundären Sporangien auswachsen. Pluriloculäre
Zoosporangien unbekannt.

Symphoricoccus radians Rk:ı.

Kleine, nur etwa ı Millimeter hohe Büschel auf lebenden Florideen. Zellen im unteren Theile der Fäden
ungefähr isodiametrisch, im oberen 6 bis 8mal so lang als breit; ihr Durchmesser beträgt ca. 15 Mikren. Uni-
loculäre Sporangien eiförmig, 15 bis 20 Mikren breit und 20 bis 25 Mikren lang.

Vorkommen. Auf Polysiphonia elongata und nigrescens in der Kieler Bucht, 8 bis 15 Meter tief. Fruc-
tifieirt im August. j

Erklärung der Abbildungen.
Fig. ra bis 7 gezeichnet von Dr. F. SCHÜTT; Fig. ıb und 8 gezeichnet von P. Kuckuck.

Fig. 1a. Büschel eines jüngeren, fructificirenden Pflänzchens, bei welchem die Enden der Assimilations-
fäden fortgelassen sind. (170).

Fig. 1b. Habitusbild eines älteren Pfänzchens. Bei a die Basis des primären Büschels mit gegliederten
Wurzelhaaren und Sporangien; an einem Assimilationsfaden ist ein verzweigter und Sporangien tragender Seitenast
entstanden. Bei b ein secundäres Büschel mit Sporangien und Wurzelhaaren aus einem horizontal gewachsenen
Assımilationsfaden entsprungen. (3).

Fig. 2. Zellen aus der wachsenden Basis eines jüngeren Assimilationsfadens mit einer noch geringen An-
zahl plattenförmiger Chromatophoren. (1209).

Fig. 3. Ausgewachsene Zelle aus dem oberen Theile eines Assimilationsfadens mit zahlreicheren Chroma-
tophoren von mehr gestreckter Form. (1299).

Fig. 4. Stück aus dem mittleren Theile eines Assimilationsfadens mit Anfängen vegetativer Aeste und
jungen Sporangien in verschiedener Ausbildung; unter einigen der Sporangien bemerkt man die Ersatzzellen. (#09).

Fig. 5. Eine andere Gruppe junger Sporangien am mittleren Theile eines Assimilationsfadens. (29).

Fig. 6 und 7. Reife Sporangien mit differenzirten Zoosporen. Der Inhalt durch Glycerinwirkung ein
Wenig contrahirt. (1299).

Fig. 8. Entleerte Sporangien, in deren Hülle aus den Ersatzzellen neue Sporangien hineingewachsen
sind. (820),

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Genus Mellmanıa Re.

Fadenförmige, verzweigte, mehrreihige, mit kürzeren, einreihigen Aesten besetzte Thallome. Das Längen-
wachsthum vollzieht sich durch intercalare Zelltheilung, eine als besonderer Vegetationspunkt anzusprechende Region
ist nicht unterscheidbar. Der mehrreihige Thallus ist im Innern solid, der Querschnitt ähnelt demjenigen einer
Sphacelaria. YFarblose Haare mit basalem Wachsthum finden sich auf den Endzellen und seitlich an den Zweigen,
gegliederte Wurzelhaare wachsen aus der Basis des Thallus hervor. Die Chromatophoren sind in Mehrzahl in
jeder Zelle vorhanden, es sind kleine ovale und biscuitförmige Scheiben, bei älteren Pflanzen sind sie mehr
verlängert und unregelmässiger geformt. Zweierlei pluriloculäre Sporangien sind vorhanden, gewöhnlich auf
verschiedene Individuen vertheilt; nur einmal ward eine Pflanze gefunden, welche zugleich beiderlei Sporangien
trug, die als intercalare und als Sorus-Sporangien unterschieden sein mögen.

Die intercalaren Sporangien entstehen durch vermehrte Längs- und Quertheilung von Thalluszellen,
sowohl der einreihigen wie der mehrreihigen Aeste; in der Regel wandelt sich eine Anzahl beisammen gelegener
Thalluszellen in Sporangien um. In jedem Fache gelangt eine, mit einem braunen Pigmentfleck versehene
7,oospore zur Ausbildung ; die Zoosporen entweichen aus der Oeffnung einer an der Oberfläche gelegenen Zelle.
Die Sorussporangien bilden sich durch papillenförmige Aussprossung einzelner Zellen, in der Regel entspricht
ein Sorus einer Gliederzelle, und kann der Sorus aus 4 bis 30 Sporangien bestehen. Die Längsaxe des Sporangiums
steht normal zur Oberfläche des Thallus, das Sporangium enthält 2 bis 4 in der Regel in einer Reihe liegende
Fächer, in jedem Fache ist eine, ebenfalls mit einem Chromatophor und einem braunen Pigmentfleck ausgerüstete
Uniloculäre Sporangien fehlen.

Zoospore vorhanden. Die Sporangien öffnen sich am Scheitel.

Kjellmania sorifera Rk:.

'Thallus ro bis 50 Millimeter lang, seitlich verzweigt, die Hauptaxe 0,1 bis 0,5 Millimeter dick, schlaff, oft
hin- und hergebogen, einzeln oder in kleinen Büscheln am Substrate befestigt, von hellbrauner Farbe.

Vorkommen. An Steinen und grösseren Algen in einer Tiefe von ıo bis 25 Meter, in der westlichen

Ostsee. Im Frühling und Sommer.
Erklärung der Abbildungen.
Fig. ı bis 4, 6 bis Iı gezeichnet von Dr. F. Schütt, Fig. 5, ı2 und ı3 von P. Kuckuck.
Fig. 1. Zwei Pflanzen in natürlicher Grösse.
Fig. 2. Spitze eines fructificirenden Seitenastes mit Sorus-Sporangien und zwei Haaren. (179).
Fig. 3. Mehrreihiges Stück aus dem oberen Theile einer Pflanze mit Sorus-Sporangien. (179),
Fig. 4. Junger, im Wachsen begriffener Seitenast mit Haarspitze. (179).
Fig. 5. Stück aus dem älteren mehrreihigen Thallus mit einer, einen Sorus tragenden Zelle. (699),
Fig. 6 und 7. Stücke dünner Aeste mit jungen Sorus-Sporangien. (629).
Fig. 8, 9 und 10. Optischer Längsschnitt durch Thallusstücke mit verschiedenen Habitusformen von Sori. (#29).
Fig. 11. Zweigstück einer Pflanze mit intercalaren Sporangien, die Sporangien im oberen Theile entleert,

daneben Zoosporen; unterhalb vegetative Zellen. (329).

Fig. 12. Optischer Längsschnitt eines sehr kurzen intercalaren Sporangiums, um die Fächerung zu zeigen. (329),

Fig. 13. Querschnitte a eines jüngeren, b eines älteren vegetativen Thallus. (299),

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Parey

Genus Asperococcus LAMOUR.

Thallus ceylindrisch oder flach, in der Regel hohl, an der Basis meist in einen kurzen Stiel zusammen-
gezogen und mit gegliederten Wurzelhaaren haftend. Das Wachsthum vollzieht sich durch intercalare Zelltheilung.
Der Querschnitt lässt eine kleinzellige Rinde und eine grosszellige Subcorticalschicht unterscheiden. Chromatophoren
klein, linsen- und biscuitförmig, zahlreich. Der Thallus trägt terminal und seitlich farblose Haare mit basalem
Wachsthum und kleine, starre wenigzellige, assimilirende Borsten (Stacheln), letztere besonders in der Nähe der
Sporangien. Einfächerige Zoosporangien kugelig, den Thallus aufsitzend, am Scheitel sich öffnend. Vielfächerige
Zoosporangien unbekannt.

Asperococcus echinatus Mexrr. sp. var. filliformis Re.

In Büscheln beisammenstehend, 10 bis 40 Millimeter lang, 0,1 bis 0,2 Millimeter dick. Thallus der dickeren
Individuen hohl mit zwei Zellschichten, der zartesten aus nur einer Zellreihe gebildet mit streckenweise auftretender
Längstheilung in den Zellen; zwischen beiden Extremen finden sich Uebergänge. Sporangien ganz vereinzelt oder
in querbandförmigen Sori beisammen.

Vorkommen. An Zucus vesiculosus und serratus bei einer Tiefe von 4 bis 10 Metern in der westlichen
Ostsee. Fructificirtt im Sommer.

Erklärung der Abbildungen.
Gezeichnet von P. Kuckuck.

Fig. 1. Ein Büschel der Pflanze an Zzcus veszculosus haftend, in natürlicher Grösse.

Fig. 2. Basis eines stärkeren Individuums mit zahlreichen Wurzelhaaren; bei h entwickelt sich aus der
Zelle eines Wurzelhaars ein aufrechtes Haar mit basalem Wachsthum. (1'329).

Fig. 3. Ein junges, der ganzen Länge nach in lebhafter Zelltheilung begriffenes Individuum (12°).

Fig. 4. Stück aus dem mittleren Theile eines dickeren Thallus in der Oberflächen-Ansicht, mit zahlreichen
Haaren, Assimilations-Borsten (Stacheln) a, sowie jüngeren und fast reifen Sporangien. (?2°).

Fig. 5. Eins der dünnsten, schon fructificirenden Individuen, die beobachtet wurden; bei a Assimilations-
Borsten. (12°).

Fig. 6. Querschnitt durch ein Exemplar von mittlerer Stärke; die Subcorticalzellen umgeben einen sehr
engen axilen Hohlraum. (22°).

Fig. 7. Querschnitt eines stärkeren Exemplars mit weiterem Hohlraum, einem jungen und einem entleerten
Sporangium, zwei Haaren und drei Assimilations-Borsten. (?%°).

Fig. 8. Einige Corticalzellen mit Chromatophoren in der Oberflächen-Ansicht. (°2°).

Fig. 9. Eine Assimilations-Borste. (62°).

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Genus Ralfsıa BERK.

Flache, dem Substrat anliegende Krusten von anfangs kreisförmigem, später mehr weniger unregelmässigem
Umriss, zuletzt sich oft dachziegelig übereinander schiebend. Das Flächenwachsthum vollzieht sich durch Theilung
der Marginalzellen, das Dickenwachsthum, von dem keilförmig sich zuschärfenden Rande ausgehend, durch
Entwicklung von congenital verwachsenen Zellreihen, welche- wenigstens in den älteren Theilen einer Scheibe
normal zur basalen Zellschicht stehen; das Wachsthum dieser Zellreihen erfolgt vorwiegend. wenn auch nicht
ausschliesslich, durch Theilung der Endzellen. In jeder Zelle befindet sich constant nur ein plattenförmiger
Chromatophor. Aus diesem fest gefügten parenchymatischen Thallus erheben sich an circumscripten Stellen dicht
stehende, aber doch nicht verwachsene, aufrechte Zellfäden, die sich mitunter gabeln, und welche die Fortsetzung
der verticalen Zellreihen des parenchymatösen Thallus bilden. Diese Assimilationsfäden wachsen ebenfalls vorwiegend,
wenn nicht ausschliesslich durch Theilung ihrer Endzellen, sie durchbrechen dabei die eine Art von zusammen-
hängender Cuticularschicht bildenden verdickten Aussenwände des ursprünglichen Thallus; die Form der Fäden ist
keulenförmig, sie sind an der Basis dünner als am oberen Theile. Farblose Haare mit basalem Wachsthum können
einzeln oder büschelweise aus den obersten Zellen des Thallus auf verschiedenen Entwicklungsstadien desselben
gebildet werden; entstehen sie frühzeitig, so sind sie trichterförmigen Gruben des Thallus eingesenkt. Die
uniloculären Zoosporangien entstehen aus seitlichen Ausstülpungen der Basalzellen der Assimilationsfäden, sie
drängen den Assimilationsfaden zur Seite, so dass sie im ausgebildeten Zustande terminal zu stehen scheinen. Die
Form der Sporangien ist verkehrt eiförmig, sie entleeren die zahlreichen Zoosporen durch ein Loch am Scheitel.
Pluriloculäre Sporangien unbekannt.

Ralfsia verrucosa Akesch. sp.

Parenchymatische Zellreihen des Thallus aus der Basalschicht bogenförmig aufsteigend, die convexe Seite
des Bogens dem Rande zukehrend. Chromatophoren in den Assimilationsfäden viel heller gefärbt als in den
Parenchymzellen des Thallus, und wenig scharf gegen das Zellenplasma abgesetzt. Die Sporangien tragenden
Assimilationsfäden bilden höckrige Sori von unregelmässigem Umriss. Krusten derb, lederartig, meist leicht vom
Substrate sich lösend, 5 bis 100 Millimeter breit.

Vorkommen. An Pfählen, Steinen und Muschelschalen der Litoralregion, in den deutschen Meeren
verbreitet. Fructificirtt im Sommer und Herbst.

Raltsia clavata Cam. sp.

Parenchymatische Zellreihen des Thallus am Rande aus der Basalschicht mehr gerade emporsteigend, wenn
bogenförmig, so ist die concave Seite dem Rande zugekehrt. Chromatophoren der mitunter gabelig getheilten
Assimilationsfäden ebenso dunkel gefärbt wie diejenigen des parenchymatischen Theils der Pflanze. Sporangien
tragende Sori meistens glatt. Krusten dünner, fest am Substrate haftend, 2 bis 2o Millimeter breit.

Vorkommen. An Steinen und Muscheln, litoral und sublitoral, in den deutschen Meeren verbreitet.
Fructificirt im Sommer und Herbst.

10

Erklärung der Abbildungen.
Gezeichnet von P. Kuckuck.
Fig. ı bis 13 Ralfsia verrucosa.

Fig. 1. Verschieden alte Krusten der Pflanze auf einem Ziegelbruchstück, in natürlicher Grösse.

Fig. 2. Skizze eines Durchschnittes aus dem mittleren Theil einer alten Kruste mit dachziegelig über
einander gewachsenen Thallus-Lappen; der Gegensatz des Parenchyms und der Sori, sowie die Haarbüschel, sind
angedeutet. (Schwache Vergrösserung).

Fig. 3. Stück aus der Randzone der basalen Zellschicht des Thallus, von unten gesehen. (32°).

Fig. 4. Längsschnitt durch den wachsenden Rand des Thallus mit einem eingesenkten Haarbüschel. (#2).

Fig. 5. Längsschnitt durch den Rand eines in der Entwicklung begriffenen Sorus, die Entstehung der
Assimilationsfäden und deren Durchbruch durch die Cuticularschicht zeigend. (62°).

Fig. 6. Stück eines Längsschnitts aus dem älteren Thallus mit entwickelten Assimilationsfäden und
Sporangien. (32°).

Fig. 7. Ein analog geführter Schnitt mit einem fast reifen und einem entleerten Sporangium. (#2).

Fig. 8. Ansicht der aus den Assimilationsfäden gebildeten Schicht von oben. (629).

Fig. 9 und 10. Assimilationsfäden mit jüngeren Sporangien. (#29).

Fig. ıı. Verzweigtes Protonema, aus einer gekeimten Spore entwickelt. (°2°).

Fig. ı2 und 13. Anfänge junger Thallome, am Protonema entstanden. (32).

Fig. 14 bis 20 Ralfsıa clavata.

Fig. 14. Pflanzen auf der Oberfläche eines Steins in natürlicher Grösse.

Fig. ı5. Radialschnitt durch den wachsenden Rand des Thallus. (32°).

Fig. 16. Radialschnitt aus dem Thallus in einiger Entfemung vom Rande; rechts die Entstehung der
Assimilationsfäden. (?90),

Fig. 17. Stück aus der Randpartie der basalen Zellschicht, von unten gesehen. (°2°).

Fig. 18. Schnitt aus dem fructificirenden Theile eines Thallus mit Assimilationsfäden, zwei annähernd
reifen und einem entleerten Sporangium; ausserdem sind ein aufrechtes Haar und einige kurze Wurzelhaare
dargestellt. (62°).

Fig. 19. Oberflächenansicht der Stelle eines jungen Thallus, wo eben die Assimilationsfäden auszusprossen
beginnen. (629),

Fig. 20. Gabelig getheilter Assimilationsfaden. (29).

Laute) Zzosmrekes:

Genus Mikrospongium Re.

Kleine flachgewölbte Scheiben von mehr oder weniger kreisföormigem Umriss und gallertartiger Consistenz.
Eine anfangs einschichtige, später zweischichtige Basalplatte mit fächerförmiger Anordnung der Zellen, deren Ver-
grösserung durch Theilung der Marginalzellen erfolgt, ist dem Substrate angeschmiegt. Aus dieser Basalplatte
erheben sich ausser vereinzelten farblosen Haaren aufrechte, mehr oder weniger verzweigte Assimilationsfäden, die
sich hauptsächlich durch Theilung der Scheitelzelle, aber auch (in geringerem Masse) durch Ouertheilung von Glieder-
zellen verlängern. In den Zellen finden sich ein oder zwei, selten mehr, plattenförmige Chromatophoren. Die
Zoosporangien entspringen seitlich an den Assimilationsfäden. Die pluriloculären Sporangien sind kleine Aeste mit
verkürzten Zellen, in jeder Zelle entwickeln sich ı bis 2 Zoosporen, die Oeffnung findet an der Spitze statt. Die
uniloculären Sporangien sind ei- oder keulenförmig, sie finden sich seitlich an den Assimilationsfäden meist auf
einem wenigzelligen Stiel, seltener sitzend, ausnahmsweise kann ein solches Sporangium terminal auf einem
Assimilationsfaden stehen; auch diese Sporangien öffnen sich am Scheitel.

Mikrospongium gelatinosum Rkr.

Scheiben ı bis 3 Millimeter breit, heller oder dunkler braun, gallertartig, die Fäden weichen bei einem
Druck auf das Deckglas leicht auseinander. Uni- und pluriloculäre Sporangien auf verschiedenen Pflanzen. Fäden
bald ziemlich einfach, bald reichlich verzweigt, wodurch eine beträchtliche Variabilität herbeigeführt wird. Zellen
der Assimilationsfäden ı bis 4mal so lang als breit, 5 bis 10 Mikren dick.

Vorkommen: Auf dem Thallus von Facus veszculosus und serratxs, seltener auf den Schalen von
Mytilus, in der westlichen Ostsee; fructificirt im Frühling und Sommer.

Erklärung der Abbildungen.
Gezeichnet von Dr. F. ScHürtr.
Tafel 7. Pflanze mit pluriloculären Sporangien.

Fig. 1. Ein Stück Zeus serratus mit der Pflanze in natürlicher Grösse.

Fig. 2. Durchschnitt durch den Thallus nebst seinem Substrate, man sieht die vereinzelt stehenden Haare
weit über die Assimilationsfäden hinausragen. (29).

Fig. 3. Querschnitt eines jüngeren Thallus mit wenig verzweigten Assimilationsfäden, welche durch Druck
auseinander gerückt sind. (190),

Fig. 4. Jüngere Basalscheibe. (23°).
Fig. 5. Aeltere Basalscheibe. (22°).
Fig. 6. Stück aus dem Rande einer Basalscheibe. (629).

Fig. 7. Assimilationsfäden und Haar, aus der zweischichtigen Basalscheibe hervorwachsend. (32°).

Fig. 8. Verzweigter Assimilationsfaden mit vollen und entleerten pluriloculären Sporangien s. (920),
Fig. 9. Assimilationsfaden mit vorwiegend einem Chromatophor in der Zelle. (1209),

Fig. 10. Assimilationsfaden mit jungem Sporangium sp, daneben ein Haar h auf zweizelligem Stiele. (1209).

Tafel 8. Pflanze mit uniloculären Sporangien.

Fig. 1. Habitusbild eines Büschels von Assimilationsfäden, dadurch gewonnen, dass auf einen dickeren
Längsschnitt ein leichter Druck ausgeübt wurde. (159).

12

Fig. 2. Spitze eines Assimilationsfadens mit nahezu reifem Sporangium. (1209).

Fig. 3. Terminal stehendes reifes Sporangium, dicht vor dem Austreten der Zoosporen; die Chromatophoren
der letzteren kehren ihre convexe Seite nach Aussen. (1299).

Fig. 4 bis 7. Assimilationsfäden mit Sporangien in verschiedenen Entwicklungsstadien und verschiedener
Art der Anheftung. (°2°).

Fig. 8. Stärker verzweigter Assimilationsfaden mit einem entleerten Sporangium. (52°).

Fig. 9. Basalstück aus dem in Fig. ı gezeichneten Präparate. (52°).

Bemerkung. Die auf Tafel 8 abgebildete Pflanze mit uniloculären Zoosporangien ward nur einmal,
bei Bülk unweit Kiel, auf den Schalen eines Myzilas gefunden. Im äusseren Ansehen glich sie ganz den Pflanzen
des Mierospongium gelatinosum wit pluriloculären Sporangien. Dass beide Formen zusammengehören, ist natürlich
nur Annahme, die indessen nahe liegen dürfte. Immerhin möge auch auf die Achnlichkeit hingewiesen sein,
welche zwischen unserer Pflanze der Tafel 8 und der Ralfsia spongiocarpa BATTERS!) zu bestehen scheint.

1) Vgl. BATTERS, A description of three new Marine Algae. (Extr. fr. the Linnean Society's Journal — Botany vol. 24, 1888;
pag. 452 Taf. ı8 Fig. 17 bis 21.

TFarel’92u00 18.

Genus Lepfonema Rke.

Büschelig vereinigte Assimilationsfäden, welche ursprünglich aus einem horizontalen, verästelten Protonema
hervorwachsen und sich später dicht über der Basis verzweigen können, sonst aber ganz einfach bleiben, wie
bei Zachista. Zellentheilung in den Assimilationsfäden intercalar, basipetal erlöschend. Chromatophoren in ge-
ringer Anzahl in den Zellen vorhanden, kurze, meist horizontal stehende Bänder bildend, mit unregelmässigem
Randcontour. Zweierlei Zoosporangien. Die uniloculären Sporangien eiförmig, sitzend oder kurz gestielt,
als seitlicher Auswuchs dicht über der Basis der Assimilationsfäden entspringend. Pluriloculäre Sporangien im
oberen und mittleren Theile der Assimilationsfäden aus Umwandlung von Gliederzellen gebildet, indem letztere
senkrecht zur Fadenaxe sich strecken und in 3 bis 6 Querfächer sich theilen, deren jedes ı bis 2 Zoosporen

enthält. Die Sporangien öffnen sich an der Spitze.

Leptonema fasciculatum Rke.

Bildet kleine gelbliche Büschel an Myizlus, Ascidien und grösseren Algen. Die Assimilationsfäden sind
12 bis ı5 Mikren dick.

Vorkommen. In einer Tiefe von 2 bis 25 Meter durch die westliche Ostsee verbreitet. Fructificirt im
Frühling und Sommer.

Es sind drei Unterarten zu unterscheiden:

a. Leptonema fasciculatum var. uncinatum RKE.
Pluriloculäre Sporangien terminal und dicht gedrängt an den Assimilationsfäden stehend, mit ihrer Spitze
nach einer Seite des Fadens gekehrt, wodurch die Fäden hakenförmig gekrümmt erscheinen. Die ganzen, als
Mutterzellen der Sporangien fungirenden Fadenzellen wandeln ihren Inhalt in Zoosporen um. Pflanzen sehr winzig,

nur I bis 3 Millimeter hoch.

ß- Leptonema fasciculatum var. majus RKE.

Büschel 5 bis zo Millimeter hoch. Die pluriloculären Sporangien kehren ihre Axen nach verschiedener
Richtung des Fadens, sie bilden häufig intercalar stehende Gruppen in den Assimilationsfäden. Der gesammite
Inhalt der Sporangialmutterzelle bildet sich zu Zoosporen um, der basale Theil eines Sporangiums ist oft 2 bis greihig.

Dies die verbreitetste Form.

y. Leptonema fasciculatum var. flagellare RKE.

Fäden gerade, in geringer Zahl im Büschel, kaum ı Millimeter lang, an der Spitze haarförmig verdünnt.
Pluriloculäre Zoosporangien in der Mitte des Fadens einzeln oder in lockeren Gruppen, nach Art von Ectocarpus-
Schötchen an den Zellen der Assimilationsfäden sitzend, deren übriger Theil sich nicht in Zoosporen umwandelt;
die Sporangien selbst zeigen 3 bis 4 Querfächer, in denen mitunter einzelne Längswände auftreten. Diese Form
ist vielleicht richtiger als eigene Art aufzufassen, ward bislang aber nur einmal gefunden.

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

14

Erklärung der Abbildungen.

Tafel 9. Zeptonema fasciculatum var. uncinatum.

Gezeichnet von Dr. F. Schürt.

ı. Büschel des Pflänzchens in natürlicher Grösse.

2. Habitusbild eines Büschels mit uniloculären Sporangien. (2).

3. Wachsende, in Zelltheilung begriffene Spitze eines jungen Assimilationsfadens. (1299).

4. Wachsendes Stück aus der Basis eines älteren Assimilationsfadens. (1209).

5. Spitze eines Assimilationsfadens mit grösstentheils entleerten pluriloculären Sporangien. (97°).

6. Ein ähnliches Präparat wie Fig. 5. (°29).

7. Querfächerung eines einzeln stehenden pluriloculären Sporangiums. (62°).

8. Verhalten der Chromatophoren bei der Entstehung pluriloculärer Zoosporangien. (1309).

9. Ganz junge Anlage pluriloculärer Zoosporangien in der Spitze eines Assimilationsfadens. (209).
ı0. a bis k: Entwicklung des Protonema aus der keimenden Spore; 1: Entstehung eines ersten

Assimilationsfadens am Protonema. (?7").

Fig.

11. Junges, in der Cultur erzogenes Pflänzchen (an einem Byssusfaden von Myzlus), dessen einer

Assimilationsfaden an der Spitze Zoosporangien bildet. (12%).

Fig.

ı2. Entstehung und Anheftung uniloculärer Sporangien an der Basis der Assimilationsfäden, bei e zwei

entleerte Sporangien; zugleich lassen diese Figuren die Verzweigung der Assimilationsfäden erkennen. (17).

Fig.

Fig.

Fig.

2
4.
5.
. 6. Sorus junger pluriloculärer Sporangien im optischen Längsschnitt. (#29).
yR
8.
9.

13. Ein jüngeres uniloculäres Sporangium. (1299).
14. Ein reifes uniloculäres Sporangium dicht vor dem Austreten der Zoosporen. ('%9°).
15. Austritt der Zoosporen aus einem pluriloculären Sporangium. (62 9).

Tafel 10. Fig. ı bis 9. Zeptonema fasciculatum var. maus.
Gezeichnet von Dr. F. SCHÜTT.
ı. Pflanzen in natülicher Grösse.
und 3. Vegetative Zellen aus dem unteren, wachsenden Theile von Assimilationsfäden. (13%).
Verhalten der Chromatophoren bei der Bildung pluriloculärer Zoosporangien. (1209).

Ein uniloculäres Sporangium. (?2°).

Oberflächenansicht eines solchen Sorus. (1209).
Optischer Längschnitt eines solchen Sorus, um die Fächerung zu zeigen. (
’

(229),

1200),

Stück eines Assimilationsfadens mit vereinzelter stehenden Sporangien.

Fig. 10 und ıı. Zeptonema fasciculatum var. flagellare.
Gezeichnet von P. KUCKUck.
ı0. Habitusbild eines Assimilationsfadens mit haarartig ausgezogener Spitze. (12°).

It. Junge pluriloculäre Sporangien. (2°).

15

aet LE 2 ae

Genus Desmotrichum Kürz.

Fructificirender Thallus ein unverzweigter Zellenfaden, in dessen Zellen vereinzelt Längswände auftreten;
oder ein flach und blattartig erweiterter, linealer, gegen die Basis verschmälerter, 2- bis 4-schichtiger Gewebekörper.
Haare zerstreut, einzeln stehend, zuletzt abfallend.. An der Basis des Thallus büschlige Wurzelhaare. Wachsthum
durch intercalare Zelltheilung. Uniloculäre Sporangien zerstreut, dem Thallus eingesenkt, aus Oberflächen - Zellen
desselben entstanden. Pluriloculäre Sporangien zerstreut, dem Zellfaden oder der Oberflächen -Schicht des Laubes
aufsitzend, mitunter durch einen ein- und mehrzelligen Stiel davon getrennt, oder durch Umwandlung von Ober-
flächenzellen, beziehungsweise Fadenzellen gebildet; letztere Bildungsweise kommt neben der ersteren, oft an
denselben Individuen vor. Chromatophoren ovale oder biscuitförmige, mitunter etwas bandartig verlängerte und

sogar verzweigte Platten.

Desmotrichum undulatum ]. Ac. sp.

Eine sehr vielgestaltige Pflanze, welche gewöhnlich bei einer Länge von 5 Centimetern nur eine Breite
von 0,5 bis ı Millimeter erreicht, unter Umständen aber auch bis ı2 Centimeter lang und 5 Millimeter breit
werden kann, während daneben fructificirende Zwergexemplare von nur 10 Millimeter Länge und sehr geringer
Breite vorkommen. Der Thallus besteht in der Flächenansicht durchgehends aus mehreren Zellreihen und ist im
Querschnitt 2- bis 4-schichtig. Uniloculäre Sporangien seltener als pluriloculäre, bald auf den gleichen Individuen,
wie die pluriloculären, bald auf besonderen Pflanzen.

Vorkommen. Auf den Blättern von Zoszera marina in der westlichen Ostsee, im Kattegat, Skagerrack
und an der deutschen Nordseeküste. Fructificirt im Frühling.

Desmotrichum baltieum Kiüız.

Ein einfacher Zellfaden, ı bis 10 Millimeter lang, mit einzelnen Längstheilungen in den Zellen; sehr selten
werden die Fäden durchweg aus 2 bis 4 Zellreihen gebildet und können sie dann sogar streckenweise zweischichtig
werden, ein Uebergang zu Desmotrichum undulatum, von dessen kleineren Exemplaren solche Pflänzchen schwer
zu unterscheiden sind. Uniloculäre Sporangien wurden nicht gefunden. Pluriloculäre Sporangien meist papillenförmige,
conische Protuberanzen mit breiter Basis, welche dem vegetativen Thallus aufsitzen, oder intercalar durch Um-
wandlung von Thalluszellen entstanden sind. Oft finden sich beide Typen durch Uebergänge verknüpft; sehr selten
ist das Sporangium an der Basis schmäler als in der Mitte.

Vorkommen. An Zostera marina, an verschiedenen Algen, an Cynthia und Flustra, in: verschiedenen
Tiefen durch die westliche Ostsee verbreitet Fructificirt das ganze Jahr hindurch, am häufigsten im Frühling.

Desmotrichum scopulorum Rke.
Millimeter hohe, unverzweigte Zellfäden, grösstentheils einreihig, doch stets mit einzelnen Längswänden
im Thallus. Pluriloculäre Sporangien sitzend oder gestielt, selten mit dem unteren Theile dem Thallus eingesenkt,.
an der Basis meist schmaler als in der Mitte.
Vorkommen. An Steinen der Litoralregion in der westlichen Ostsee. Im Sommer.

16

Erklärung der Abbildungen.
Taf. 11. Desmotrichum undulatum.
Gezeichnet von Dr. F. Schürr
Fig. ı. Eine Gruppe von Pflanzen in der gewöhnlichen Grösse, auf einem Blatte von Zostera marina

befestigt. (4). e
Fig. 2. Mittlerer Theil eines fructificirenden Laubes in der Flächenansicht; man erkennt neben den

farblosen Haaren mit basalem Wachsthum die zitzenförmigen pluriloculären Sporangien. (18°).

Fig. 3. Spitze eines fructificirenden Laubes (180).

Fig. 4. Basis eines Thallus mit gegliederten und theilweise verzweigten Wurzelhaaren. (!$9).

Fig. 5. Flächenansicht aus der Mitte eines ganz jungen, erst aus zwei Zellreihen bestehenden Exemplars. (62°).
Fig. 6. Flächenansicht aus einem etwas älteren Exemplare mit zwei Haaren am Rande. (629).

Fig. 7. Querschnitt eines schmalen Laubes mit zwei pluriloculären (a) und einem uniloculärem (b)

Sporangium. (329).

Fig. 8. Optischer Querschnitt durch die Basis zweier neben einander liegendender pluriloculärer
Sporangien. (22°).

Fig. 9. Flächenansicht aus dem gleichen Thallus, wie Fig. 7, mit vier pluriloculären und einem uni-
loculären Sporangium. (52°).

Fig. 10. Querschnitt eines Thallus mit geschlossenen pluriloculären Sporangien, nach Einwirkung von
Glycerin. (129).

Fig. ır. Querschnitt eines sehr schmalen Thallus mit zwei entleerten pluriloculären Sporangien und

einem Haare. (1$°),

Tafel ı2 und ı3. Fig. ı bis 9. Desmotrichum balticum.
Gezeichnet von Dr. F. Schütt.

Fig. 1. Rasen des Pflänzchens auf einem Blatte von Zostera marina. (2).
Fig. 2. Ein kleines fructificirendes Pflänzchen. Bei r die Basis mit wurzelhaarartigen Aussackungen, h

Haare, deren eines auf der Spitze des Fadens steht; s pluriloculäre Sporangien, grösstentheils intercalar. (17°).
Stück eines anderen Pflänzchens mit theilweise mehr hervortretenden pluriloculären Sporangien. (32°).

Kig. 3.

Fig. 4. Stück aus dem oberen Theile eines ganz jungen Pfänzchens, um die Chromatophoren zu zeigen. (1209).
Fig. 5. Basis des in Fig. 2 gezeichneten Pfänzchens zur Darstellung der Chromatophoren. (929).

Fig. 6. Erste Anlage der pluriloculären Sporangien. (29).

Fig. 7. Weitere Entwicklungsstufen der Sporangien. (629).

Fig. 8. Nahezu reifes Sporangium. (529).

Fig. 9. Fächerung einiger Sporangien, das obere theilweise entleert. (92),

Fig. 10 bis 12. Desmotrichum scopulorum.
Fig. 10 und 12 gezeichnet von Dr. F. Schütt,
Fig. ıı von P. Kuckuck.

Fig. 10. Oberer Theil eines fructificirenden Pflänzchens mit pluriloculären Sporangien, die theils entleert,
theils noch mit Zoosporen erfüllt sind. Ausserdem stehen farblose Haare am Thallus, dessen Spitze bei h eben-
falls in ein deutlich abgesetztes Haar ausläuft. (220),

Fig. ı1. Stück eines Pflänzchens mit gestielten Sporangien. Bei a und b ist der Stiel einzellig, bei c
vierzellig; diese 3 Sporangien sind entleert, das mit a signirte ist von einer neuen Sporangium-Anlage durchwachsen ;
e ein sitzendes, volles Sporangium, h ein Haar. (329),

Fig. 12. Spitze eines Fadens mit zwei aufsitzenden Haaren. Bei i intercalare Quertheilungen in den
Fadenzellen, bei a ist die Fächerung eines vollen Sporangiums dargestellt. (299).

37

Narbe re

Genus Scytosiphon Ac.

Thallus röhrenförmig, unverzweigt, von radiärem Bau, aus parenchymatischem Gewebe gebildet. Rinden-
schicht kleinzelliger als die inneren Gewebeschichten. Wachsthum der Pflanze durch intercalare, basipetal erlöschende
Zelltheilung. Ein plattenförmiger Chromatophor in jeder Zelle. Pluriloculäre Sporangien allein bekannt, durch
Theilung von Rindenzellen entstanden, die Zoosporen in einer Reihe angeordnet.

Scytosiphon pygmaeus Rke.
Büschelförmig wachsende Pflänzchen von etwa ro Millimeter Länge und o,ı Millimeter Dicke. Die
Sporangien bilden an der Thallusoberfläche grössere und kleinere Flecke, keine zusammenhängende Schicht; in den

einzelnen Sporangien finden sich 2 bis 4 Zoosporen.
Vorkommen. In der westlichen Ostsee, in grösserer Tiefe angewachsen; im Frühling.

Erklärung der Abbildungen.
Gezeichnet von Dr. F. SCHÜTT.

Fig. 1. Büschelförmig beisammen stehende Pflänzchen (4).

Fig. 2. Ein Stück des mittleren fructificirenden Thallus in der Flächenansicht. Die Sporangien bilden
grössere und kleinere Flecke zwischen den unveränderten Rindenzellen. Bei h ein Haar. (?2).

Fig. 3. Längsschnitt durch die Rindenschicht und durch einen Sorus von Sporangien. (1209).

Fig. 4. Flächenansicht der Rinde mit einem plattenförmigen Chromatophor in jeder Zelle. (1299),

Fig. 5. Verzweigte Protonemafäden, welche sich aus keimenden Sporen von Scylosiphon pygmaeus auf
einem Objectträger entwickelt hatten; bei h ein farbloses Haar, bei s der Scheitel eines jungen Thallus, dessen
Zellen in intercalarer Ouertheilung begriffen sind. (329).

Fig. 6 bis 10. Weitere Entwicklungsstufen von Keimpflänzchen; bei s der Scheitel mit einem aufsitzenden,
farblosen Haare. (399),

Fig. 11. Entstehung von Wurzelhaaren (r) am Basalstück eines Keimpflänzchens. (2°).

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19

Bar PS oe

Genus Ascocyclus MacGnus.

Aus einer ein- oder zweischichtigen, mehr weniger kreisrunden, peripherisch wachsenden Basalscheibe
wachsen aufrechte, meist einfache, seltener verzweigte Assimilationsfäden hervor; sind die Fäden einfach, so ver-
wandeln sich dieselben zuletzt ganz oder nur im oberen Theile in pluriloculäre Sporangien, sind sie verzweigt, so
werden einzelne Aeste zu Sporangien. Uniloculäre Sporangien unbekannt. Aus der Basalscheibe oder aus den
Fäden können farblose Haare oder einzellige farblose Schläuche entspringen. In den Zellen ein oder wenige

plattenförmige Chromatophoren.

Ascocyclus ocellatus Kürz. sp.‘

Bildet auf dem Laube von Zaminaria flexicaulis kleine Scheiben von ı bis 4 Millimeter Durchmesser.
Assimilationsfäden unverzweigt, zonenweise der Basalscheibe entspringend; letztere ist in den Zonen, welche
Assimilationsfäden und Sporangien tragen, zweischichtig, an den übrigen Stellen einschichtig. Vier bis sechs Chro-
matophoren in jeder Zelle. Haare entwickeln sich als Fortsetzung der Assimilationsfäden, deren Zellen sich

intercalar theilen.
Vorkommen. In der westlichen Ostsee und im Kattegat. Fructificirt im Frühling.

Ascocyclus reptans Cx. sp.
Bildet mehr weniger kreisförmige Scheiben auf Zucus serratus und veszculosus und unterscheidet sich von
der vorigen Art durch längere, kürzer gestielte Sporangien, welche dem ganzen Innern der Basalschicht aufsitzen.
so dass nur der Rand frei bleibt; letzterer ist allein einschichtig, der Sporangien tragende Theil der Scheibe

zweischichtig.
Vorkommen. In der westlichen Ostsee und an der atlantischen Küste Frankreichs, litoral und sub-

litoral. Fructificirt im Frühling und Sommer.

Ascocyclus balticus Rk:.

Bildet sehr kleine punktförmige Räschen auf lebenden Blättern von Zostera marina. Basalplatte ein-
schichtig, meistens nur ein plattenförmiger Chromatophor in jeder Zelle. Aus den Zellen der inneren Basalplatte
entspringen farblose Haare oder einfache Assimilationsfäden, die grösstentheils an der Spitze in pluriloculäre Zoo-
sporangien umwandeln, die Sporangien sind daher gestielt. In den Gliederzellen der Assimilationsfäden finden sich
meistens zwei Chromatophoren, die Fächer der Sporangien enthalten eine, selten zwei Zoosporen.

Vorkommen. Litoral und sublitöral in der westlichen Ostsee. Fructificirt im Frühling.

Ascocyclus foecundus Srrönr. sp. var. seriatus Rke.

Kreisrunde Scheiben von höchstens ı Millimeter Durchmesser, die einschichtige Basalplatte zeigt eine,
seltener zwei Chromatophoren in jeder Zelle. In der Mitte der Scheibe entspringen farblose Haare und kurze
Assimilationsfäden aus den Basalzellen, die Assimilationsfäden wandeln sich der ganzen Länge nach durch Ouer-
theilung der Gliederzellen in Sporangien um; jedes Querfach der Sporangien enthält nur eine Zoospore.

Vorkommen. Die Pflanze entwickelte sich im December an der Wandung eines Glasgefässes, in welchem
an Steinen wachsende Chaetopteris plumosa, aus dem Kieler Hafen stammend, cultivirt worden war.

Ascocyclus globosus R«ke.

Bildet kuglige oder halbkuglige Polster an Fadenalgen und an abgestorbenen Blättern von Zostera. Aus
einer einschichtigen Basalplatte entspringen verzweigte Assimilationsfäden, dazwischen farblose Haare. In den
Zellen finden sich ı bis 2 plattenförmige Chromatophoren. Die Haare sind dicker als die Assimilationsfäden.
Einzelne Aeste der Assimilationsfäden verwandeln sich in fadenförmige pluriloculäre Zoosporangien mit einer
Zoospore in jeder Zelle.

Vorkommen. In der westlichen Ostsee. Fructifieirt im Frühling.

Erklärung der Abbildungen.

Tafel ı5. Fig. ı und 2. Ascocyclus ocellatus.
Gezeichnet von Dr. F. SCHÜTT.
Fig. ı. Ein Stück von Zaminaria flexicaulis, mit den Scheiben der Pflanze bedeckt. (4).
Fig. 2. Radialschnitt durch eine Scheibe, darunter das Gewebe der Zaminaria. r Randzelle der Scheibe;
a Assimilationsfäden ; sp Sporangien; h Haar. (97°).
Fig. 3 bis 6. Ascocyclus reptans.
Gezeichnet von Dr. F. ScHÜTT.
Fig. 3. Stück eines Thallus von Zeus serratus mit den Scheiben der Pflanze. 4).
Fig. 4. Stück aus dem Rande einer jungen Basalscheibe-in der Flächenansicht, um den strahlenförmigen
Verlauf der Zellenreihen zu zeigen. (?%2°).
Fig. 5. Einige Zellen aus dem wachsenden Rande einer Basalscheibe; bei a Längstheilungen. (°7).
Fig. 6. Radialschnitt durch den mittleren Theil einer älteren Scheibe, die Basalplatte ist zweischichtig,
dieselbe trägt volle und entleerte Sporangien, dazwischen Assimilationsfäden verschiedenen Alters, deren einer in
ein Haar ausläuft. Darunter das Gewebe von Zucus. (62°).

Taf. 16. Fig.oı bis 4. Ascocyclus baltıcus.
Gezeichnet von Dr. F. ScHÜTT.

Fig. ı. Stück eines Blattes von Zostera marına, mit den Räschen der Pflanze bedeckt. (1).

Fig. 2. Stück aus dem Rande einer Basalplatte. (179).

Fig. 3. Verticaler Durchschnitt einer Pflanze, auf dem Gewebe des Zostera- Blattes sitzend; man unter-
scheidet leicht die Basalplatte, die Assimilationsfäden und Sporangien, aus der Mitte der letzteren erheben sich
vier lange, farblose Haare. (92°).

Fig. 4. a Spitze eines Assimilationsfadens; b und c jüngere, noch gefüllte Sporangien; d entleertes
Sporangium. (1299).

Fig. 5 bis 12. Ascocyclus foecundus var. serlatus.
Gezeichnet von P. Kuckuck.

Fig. 5. Ausgewachsene Scheiben der Pflanze an einer Glasplatte. (1).

Fig. 6. Verticalschnitt einer solchen Pflanze; a Assimilationsfäden ; b volle Sporangien; c entleerte
Sporangien, ausserdem zwei Haare. (1290).

Fig. 7. Einzelliges Anfangsstadium eines Assimilationsfadens. 120).

Fig. 8 bis 12. Junge Anfänge der Basalplatte, auf einem Objectträger entwickelt; in Fig. 9 sind die ersten
Theilungswände abnormer Weise nicht bis zum Centrum der Scheibe vorgedrungen. (1209),

Taf. 17. Ascocyclus globosus.
Fig. ı bis 6 gezeichnet von Dr. F. Schürt, Fig. 7 von P. Kuckuck.
Fig. ı. Polster der Pflanze an Cladophora gracilis. (4). ®
Fig. 2. Einige jüngere und ältere Polster. (1).
Fig. 3. Verticalschnitt aus einem Polster, um die Basalplatte, die Haare (h) und die an den Ver-
zweigungen der Assimilationsfäden meist terminal stehenden Sporangien zu zeigen. (12°).

Fig. Stück eines ähnlichen Verticalschnittes; h Haar, s Sporangien. (7
Fig. Spitze eines jungen Assimilationsfadens. (1209).

4
5
Fig. 6. Assimilationsfaden mit jüngeren Anlagen von Sporangien s. (17).
Fig. 7. Entleertes Sporangium. (1299).

Ineugamkan ano biaadeı >20)

Genus Ectocarpus Lync».

Aus kriechenden, mitunter mehr weniger pseudoparenchymatisch verwachsenen Fäden erheben sich aufrechte,
einfache oder verzweigte Fäden, oder es sind nur aufrechte, meist verzweigte Fäden vorhanden. Pluriloculäre
Sporangien durch Umwandlung von Zweigspitzen oder kurzen Zweigen entstanden und dann schotenförmig, oder
intercalar den Aesten der Fäden eingesenkt. Uniloculäre Sporangien eiförmig oder fast kugelig, an den aufrechten
‘ Fäden sitzend oder gestielt, oder intercalar, durch Umwandlung von Gliederzellen eines Fadens entstanden.

Ectocarpus sphaericus Dex». u. Sor. sp.

Horizontale, verzweigte Fäden, wuchernd in dem Gewebe gallertartiger Phäosporeen. Aufrechte Aeste kurz,
verzweigt, mit eiförmigen bis kugeligen, sitzenden oder kurz gestielten, oft gehäuften uniloculären Sporangien.
Wenige plattenförmige Chromatophoren in jeder Zelle. Pluriloculäre Sporangien auf anderen Individuen, schoten-
förmig, an aufrechten Fäden terminal oder seitenständig und sitzend, mit ı bis 2 Zoosporen in jedem Fache.

Vorkommen. An den atlantischen Küsten Europas und Nordamerikas; die abgebildete Form im T'hallus

von Microspongium gelatinosum in der westlichen Ostsee; im Sommer.

Ecetocarpus Stilophorae Ck.

Kriechende Fäden, an der Oberfläche verschiedener Algen, besonders häufig zwischen den Assimilations-
fäden von Strlophora, wachsend; diese Fäden schliessen niemals pseudoparenchymatisch zusammen. 2- bis 4-platten-
förmige Chromatophoren in jeder Zelle. Den horizontalen Fäden entspringen ausser den aufrechten, meist büschelig
verzweigten Aesten auch farblose Haare. Pluriloculäre Sporangien cylindrisch, mit meist 2 Zoosporen in jedem
Fache. Uniloculäre Sporangien unbekannt.

Vorkommen. Küsten der Normandie und der westlichen Ostsee. Fructifieirt im Herbst.

Bctocarpus repens Rke.
Kriechende Fäden reich verzweigt, meistens zu einer pseudoparenchymatischen Platte von unregelmässigem
Umriss mit einander verwachsen. Zellen mit 1- bis 2-plattenförmigen Chromatophoren. Aufrechte Fäden kurz,
meist einfach, grossentheils in sitzende oder kurz gestielte pluriloculäre Sporangien sich umwandelnd; Sporangien
von lanzettlichem Umriss mit mehr als 2 Zoosporen in jedem Querfach. Zwischen den aufrechten Fäden auch
Haare. Uniloculäre Sporangien unbekannt. Verbindet die Gattungen Zetocarpus und Ascocyelus.
Vorkommen. Auf den verschiedensten Algen, besonders Polysiphonien und Cladophoren, aber auch auf

Zostera, an den atlantischen Küsten Europas Nordamerikas. as ganze Jahr hindurch.
Zost 1 tlantischen Küsten Europas und Nordamerik Das gan hr hindurch

Eetocarpus ovatus Kırıın. var. arachnoideus Rke.

Fäden reich verzweigt, büschelförmig, ı bis 3 Centimeter lang, an der Basis mit gegliederten Wurzelhaaren
haftend. Zahlreiche kleine plattenförmige Chromatophoren in jeder Zelle. Aeste allmählich in eine Haarspitze
verdünnt, durchweg zerstreut, selten opponirt. Pluriloculäre Sporangien sitzend, einzeln oder opponirt an einzelnen
Gliederzellen der Aeste, eiförmig-länglich. Uniloculäre Sporangien einzeln, seitlich an den Aesten sitzend, seltener
intercalar aus Gliederzellen entwickelt.

Vorkommen. In der westlichen Ostsee, in einer Tiefe von 12 bis 30 Metern an Steinen und Muscheln.

Fructificirt im Frühling und Sommer.

22

Erklärung der Abbildungen.
Tafel 18. Zeiocarpus sphaericus.
Fig. ı gezeichnet von Dr. F. ScHÜTT, Fig. 2 von P. Kuckuck.
Fig. ı. Individuum mit uniloculären Sporangien; a ganz junge, b ältere, c entleerte Sporangien. (62),
Fig. 2. Individuum mit pluriloculären Sporangien; bei a gefüllt, bei b entleert. (690),
Tafel 19. Fig. ı bis 4. Zetocarpus Stilophorae.

Fig. ı, 3, und 4 gezeichnet von Dr. F. ScHÜüTTt, Fig. 2 gezeichnet von P. Kuckuck.

Fig. 1. Büschel der Pflanze auf einem Zweige von Sphacelaria racemosa. ("P).

Fig. 2. Aufrechte verzweigte Aeste mit entleerten Sporangien e. (920),

Fig. 3. a noch einfacher Assimilationsfaden, s volle Sporangien, e entleertes Sporangium, h Haar. ( 620),
Fig. 4. Sporangium, an der Spitze bereits entleert. ("29®). ;

Fig. 5 und 6. Zetocarpus repens.

Gezeichnet von P. KuUcKuck.

Fig. 5. Junges, theilweise pseudoparenchymatisches Basallager. (32°).
Fig. 6. Ein horizontaler Faden mit kurzen Assimilationsfäden, Sporangien und einem Haare. (120),

Taf. 20. Zetocarpus ovatus var. arachnoideus.

Gezeichnet von P. Kuckuck.

1. Ein Ast mit pluriloculären Sporangien, die grösstentheils zerstreut stehen. ($P).
Fig. 2. Zweig mit opponirten pluriloculären Sporangien. (139).
3. Basalstück einer Pflanze mit Wurzelhaaren. (129).
Fig. 4. Vegetative Zellen mit einem pluriloculären Sporangium. (629).
Fig. 5. Stück eines Zweiges mit uniloculären Sporangien; in den Zellen stehen die Chromatophoren sehr
dicht und haben einen unregelmässigen Umriss angenommen. (699),
Fig. 6. Stück eines dünnen Zweiges mit intercalaren uniloculären Sporangien, von derselben Pflanze, wie

Fig. 5. (520),

23

ae Zul,

Genus Rhodochorton NäÄc.

Thallus ein verzweigter, häufig aus horizontalen, am Substrate haftenden oder pseudoparenchymatisch ver-
bundenen Zellreihen hervorwachsender Zellenfaden. Tetrasporen kreuzweise getheilt.

Rhodochorton chantransioides Rke.

In dichtem Rasen von ı bis 2 Millimeter Höhe feste Gegenstände überziehend, ohne horizontale Basal-
fäden. Fäden äusserst zart, unregelmässig, fiederartig verzweigt. Gliederzellen der Hauptaxe ı2 bis ı6mal so
lang als breit. Chromatophoren schmalere oder breitere Schraubenbänder. Tetrasporangien auf kurzen Seitenästen
zu zwei und drei neben einander, seltener einzeln.

Vorkommen. In einer Tiefe von 18 Metern in der westlichen Ostsee. Im Sommer.

Erklärung der Abbildungen.

Gezeichnet von P. Kuckuck.

Fig. ı. Ein Räschen der Pflanze. (1).
Fig. 2. Die fructificirende Pflanze, um den Habitus zu zeigen. (7).
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Fig. 3. Drei Zellen der Hauptaxe mit Chromatophoren. (1209).
Fig. 4 bis 9. Jüngere und ältere Tetrasporangien, in Fig. 8 ein entleertes, in Fig. 9 ein einzeln sitzendes. (62).

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Genus Antithamnıon Näc.

Habitus von Callithamnion, die Aeste grösstentheils opponirt. Tetrasporen kreuzweise getheilt. Chromato-
phoren verzweigte Platten.

Antithamnion boreale Gw:ı forma baltica.
Aeste lang, schlaff, locker verzweigt, Aestchen ohne die für Anzithammion Plumula charakteristischen

Eiweissbläschen. Tetrasporangien sitzend.
Vorkommen. Subhlitoral an grösseren Algen, Steinen und Muscheln in der westlichen Ostsee. Im Sommer.

Erklärung der Abbildungen.
Gezeichnet von P. Kuckuck.
Fig. ı. Einige Pflänzchen am Substrat. (4).
Fig. 2. Weachsende Spitze der Hauptaxe mit der Anlage der Seitenäste erster und zweiter Ordnung. (32°).

Fig. 3. Jüngere Zelle einer dünneren Seitenaxe mit Chromatophoren. (129).
Fig. 4. Stück aus einer älteren Zelle der Hauptaxe mit Chromatophoren. (120°).
Fig. 5. Ein seitenständiger, fructificirender Langtrieb. (1?).

Fig. 6. Kurztrieb mit 'Tetrasporangien verschiedenen Alters. (129).

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Genus Blastophysa Rt.

Grüne Blasen von sehr verschiedener Form, denen lange, farblose, wurzelhaarartige Fäden entwachsen,
und welche ausserdem, doch nicht immer, büschlig stehende, lange farblose Borsten mit zwiebelartig verdickter
Basis tragen. Die grünen Blasen sind durch Zellwände gegen das Lumen der farblosen Fäden abgegrenzt, mit-
unter findet man auch eine zarte Wand quer durch das Innere der Blase gespannt. Die Zellwand der Blase kann
zart sein oder gallertartig verdickt und ist dann deutlich geschichtet. Dem körmigen, vielkernigen protoplasmatischen
Wandbelege sind zahlreiche, 5- oder 6-seitige, plattenförmige Chromatophoren eingelagert, in einzelnen derselben
findet man einen grossen Amylonheerd. Die Pflanze vermehrt sich durch Theilung der Blase in zahlreiche
kleinere Bläschen, Schwärmsporen konnten mit Sicherheit nicht nachgewiesen werden.

Blastophysa rhizopus Re.

Durchmesser der Blasen 50 bis 120, Durchmesser der Rhizoidfäden 8 bis 16 Mikren.
Vorkommen. In der westlichen Ostsee auf Zzldendbrandtia vosea und der Basalscheibe von Dammontia

Rliforimis.

Erklärung der Abbildungen.

Gezeichnet von P. Kuckuck.

Fig. ı. Eine Blase mit zwei Rhizoidfäden (r) und zwei Büscheln von Borsten (b). (329).

Fig. 2. Eine Blase mit einer Ausstülpung und einem verzweigten Rhizoidfaden. (32°).

Fig. 3. Eine Blase mit allmähligem Uebergang in einem Rhizoidfaden. (32°).

Fig. 4. Eine Blase mit stark verdickter und geschichteter Wand und QOuertheilung im Innern. (32°).
Fig. 5. Eine ähnliche Blase wie Fig. 4, mit stielartigem, geschichteten Ansatz. (329).

Fig. 6 und 7. 7wei junge, noch dünnwandige Blasen. (699).

Fig. 8. Blase mit proliferationsartiger Entwicklung zweier Tochterbläschen in einem Rhizoidfaden. (?2).

5
Fig. 9. Chromatophoren und Amylumheerd. (1200),
ig. 10 und ıı. Theilung und Zerfall der Blasen in zahlreiche Tochterbläschen. (32% und 1209).

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Genus Cladophora Kurz

Verzweigte, nicht gallertartige Zellfäden mit gitterartigem Chromatophor, der häufig durch Zuwachsen der
Gitteröffnungen homogen wird; Fortpflanzung durch Schwärmsporen. Fäden mehr weniger aufrecht, gewöhnlich
in Büscheln oder Rasen.

Cladophora pygmaea Rke.

Kleine Rasen von ı Millimeter Höhe. Pflanze stark verzweigt, an der Basis mit einer hyalinen, aus der
Zellwand gebildeten Scheibe haftend. Zellen anfangs cylindrisch, mit durchbrochenem, glatten Chromatophor, später
meist tonnenförmig aufgetrieben, wenig länger als breit. Der Chromatophor wird in den älteren Zellen gleichförmig
und hat dann ein gekörntes Aussehen. Die Wand älterer Zellen ist dick und geschichtet. Ein Austreten von
Schwärmsporen konnte nicht beobachtet werden.

Vorkommen. Sublitoral an Steinen in der westlichen Ostsee. Das ganze Jahr hindurch.

Erklärung der Abbildungen.

Fig. 1, 3 und 4 gezeichnet von Dr. F. Schütt, Fig. 2 gezeichnet von P. Kuckuck

Fig. 1. Ein ganzes Pflänzchen. (129).

Fig. 2. Zwei jüngere Zellen aus der Spitze eines Astes. (1200),
Fig. 3. Aeltere Zelle einer Ästspitze. (629).

Fig. 4. Basalstück der Pflanze. (629).

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31

Bar re 24.

Genus Epicladıa RkeE.

An der Oberfläche des Substrats kriechende Pflanze, aus stark verzweigten Zellfäden gebildet, die in den
älteren Theilen zu einer einschichtigen, pseudoparenchymatischen Platte mit einander verwachsen. Ein homogener,
wandständiger Chromatophor in jeder Zelle, darin ein Amylonheerd. Fortpflanzung durch Schwärmsporen, die
zahlreich in jeder Zelle gebildet werden und durch ein rundes Loch in der Wand entweichen.

Epicladia Flustrae Re.
Zellen der freien Fäden meist länger als breit, die der verwachsenen Platte mehr isodiametrisch; Breite
der ersteren 5 bis 10, der letzteren ı2 bis 20 Mikren.

Vorkommen. Auf Hustra foliacea an tieferen Stellen der westlichen Ostsee. Das ganze Jahr hindurch.

Erklärung der Abbildungen.
Gezeichnet von Dr. F. SCHÜTT.
5. Habitus der Pflanze in einer Vertiefung von lustra wachsend. (17°).
Fig. 6. Pseudoparenchymatisches Lager mit den freien Fäden am Rande. (#29).
g Einige Zellen der freien Fäden. (629).
Einige Zellen der parenchymatischen Platte. (°29).
Fig. 9. Zellen mit Schwärmsporen, davon eine entleert. (7°).

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Bemerkung. Diese Pflanze steht jedenfalls dem Genus Zntocladia RKE. äusserst nahe; ob beide Genera
in eins zusammenzuziehen sind, wird erst aus einer eingehenden monographischen Bearbeitung beider ersehen
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33

Tafel 285.

Genus Pringsheimia Re.

Kleine auf Algen wachsende, polsterförmige, einschichtige Scheiben, deren Randzellen flach, deren mittlere
Zellen keilförmig sind und ihre Längsaxe senkrecht zur Basis der Scheibe stellen. Ein grosser plattenförmiger
Chromatophor und ein Amylonheerd in jeder Zelle. Die Scheiben vergrössern sich durch peripherisches Wachsthum,
indem die Randzellen in radialer Richtung Aussackungen treiben und diese durch Scheidewände abgliedern.

Es zeigen die ungeschlechtlichen Individuen einige Abweichungen von den Geschlechtspflanzen. Die nach
Aussen gekehrten Zellwände der ungeschlechtlichen Pflanzen sind stärker verdickt als die Radialwände, dabei gallertartig
und geschichtet; in den centralen Zellen der Scheibe bilden sich wenige grosse Schwärmsporen aus, die durch ein
rissförmiges Loch in der Zellwand entweichen. Neutrale Schwärmsporen birnenförmig, mit zwei Cilien und einem
bräunlichen Augenpunkt am farblosen Vorderende, der Chromatophor ist eigenthümlich gekörnelt.

Die Zellwände der Geschlechtspflanzen sind an allen Seiten der Zellen gleichmässig zart, die Zellen
runden sich zuletzt ab, so dass Intercellularräume zwischen ihnen entstehen. In den mittleren Zellen bilden sich
sehr zahlreiche kleine Gameten, welche durch die am Scheitel sich verflüssigende Zellwand entweichen, ohne nach
ihrem Austritt, der im Klumpen erfolgt, von einer Blase umkleidet zu sein. Die Gameten sind kurz -birnförmig,
sie enthalten einen schüsselförmigen glatten Chromatophor, einen braunrothen Augenpunkt und besitzen zwei
Cilien am Vorderende. Durch ihre Copulation entsteht eine fast kuglige Zygote mit zwei Chromatophoren, zwei
Augenpunkten und vier Cilien, die abgeworfen werden, wenn die Zygote zur Ruhe kommt.

Pringsheimia scutata Re.
Durchmesser der Scheiben 0,1 bis 0,2 Millimeter; die ungeschlechtlichen sind manchmal etwas grösser
und umhüllen dünne Aeste der Algen, an denen sie wachsen. Länge der neutralen Zoosporen etwa 15 Mikren,

der Gameten 4 Mikren.
Vorkommen. An Polysiphonien, Sphacelarien und alten Zostera-Blättern sublitoral in der westlichen

Ostsee. Im Winter und Frühling.

Erklärung der Abbildungen.
Fig. ı bis 4 gezeichnet von Dr. F. Schürr, Fig. 5 bis 10 gezeichnet von P. Kuckuck.

Fig. ı. Ungeschlechtliche Pflanze auf einem Zweige von Polysiphonia urceolata;, der Inhalt der mittleren
Zellen entleert. (92°).

Fig. 2. Ungeschlechtliche Schwärmsporen. (92°).

Fig. 3. Habitusformen ungeschlechtlicher Scheiben, welche das Substrat fast ganz einhüllen. (100),

Fig. 4. Eine ganz junge Scheibe an Polysiplionia urceolata. (62°).

Fig. 5. Durchschnitt einer, einen Ast von Zolysiphonia nigrescens umhüllenden ungeschlechtlichen
Pflanze; die Zellwand ist auf der Aussenseite sehr stark verdickt. (329).

Fig. 6. Durchschnitt aus einer anderen ungeschlechtlichen Pflanze mit starker Verdickung der unteren
und der oberen Aussenwände. (1200),

Fig. 7. Durchschnitt einer an Polysiphonia urceolata haftenden Geschlechtspflanze mit Gametenbildung
und einer entleerten Zelle. (329).

Fig. 8. Ansicht einer Geschlechtspflanze in Gametenbildung von der Seite. (#29).

Fig. 9. Ansicht einer Geschlechtspflanze in Gametenbildung von Oben, um die Intercellularräume zu
zeigen; zwei Zellen sind entleert. (29).

Fig. 10. Gameten vor und nach der Copulation; die Zygote wirft ihre Cilien ab. (1209),

10

34 ’»

_ Bemerkung. Die Zusammengehörigkeit der auf Tafel 25 abgebildeten geschlechtlichen und ungeschlecht-
lichen Pflanzen ist insofern nur eine hypothetische, als die Erziehung einer Form aus der anderen durch Cultur-
versuche bislang nicht geglückt ist. Durch das gemeinsame Vorkommen an einem Standorte, wo grüne Algen
überhaupt selten sind, erfährt aber die Hypothese eine Verstärkung ihrer Wahrscheinlichkeit. Würden die Pflanzen
nicht dem Entwickelungskreise einer Species angehören, so würden zwei miteinander vorkommende Arten der
Gattung Pringsheümia vorliegen, von denen die eine nur als Geschlechtspflanze, die andere nur als ungeschlechtliche
Pflanze zur Beobachtung gelangte. Bei der unter Zoosporeen mehrfach constatirten Differenz im Bau geschlechtlicher
und ungeschlechtlicher Individuen (man denke nur an Dofrydrum granulatum) erscheint aber die Wahrscheinlichkeit
des Zusammengehörens beider Pringsheimia-Formen als die grössere.

Druck von Schmidt & Klaunig in Kiel.

Iıth Anıst werner # Winter Frankfert

lumbricalis Kütz, sp.

Taf: 2.

Atlas deutscher Meeresalgen.

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Atlas deutscher Neeresalgen.

aslelsl Le:

© 12.

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Jıuth.Anst. v Werner aWinter, Frankfurt 9M.

KAjellmania sorifera Rke.

Taf: #.

tllas deutscher Meeresalgen.

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Asperocoecus echinatus Mert. sp. var: filiformis Rke

Atlas deutscher Meeresalgen

1-15 Ralfsia verrucosa Aresch. sp

af 5u.6.

# Carm. sp.

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14-20 Ralfsia el

Taf 7.

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Atlas deutscher Meeresalgen.

Mierospongium gelatinosum Rke.

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Atlas deutscher Meeresalgen.

Mierosnongium gelatinosum Rke.

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Taf 9.

& CET el

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Atlas deutscher Meeresalgen.

Lentonema fasciculatum Rke. var uncinalum.

‚ltlas deutscher Meeresalgen. . Taf: 10.

Fig. 1-9. Lenltonema fasciculatum Rke. var. majus.

Fig. 10.11. Deptonema fascieulatum var Flagellare.

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Tat: 11.

Atlas deutscher Meeresalgen

Desmotrichum undulatum J. Ag. sp.

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Atlas deutscher Meeresalgen.

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Fig. 1-9. Desmotrichum balticum Kütz

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Fig. 10-12. Desmotrichum scopulorum Rke.

Taf: 14.

Atlas’ deutscher Meeresalgen.

Scytosyıhon nygmaens Rke.

Atlas deutscher Meeresalgen. Taf 15.

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Fig.1. 2. Ascoeyelus ocellatus Kütz sp. Fig. 3-6 Ascocyelus replans Cr Spt

Taf 16.

‚Atlas deutscher Meeresalgen.

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balticus Rke.

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Fig. 62)

Atlas deutscher Meeresalgen. Taf: 17.

Ascocyelus globosus Rke

Atlas deutscher Meeresalgen. Taf 18.

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Ectocarmus sjihaericus Derb. et Sol SI.

Taf. 19.

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Atlas deutscher Meeresalgen.

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Fig. 5.6. Ectocarpıus repens Rke.

Fig. 1-1. Ectocarpıus Stilonhorac Cr.

Tüf' 20.

Atlas deutscher Meeresalgen.

Eetocarpus ovalus Krellm. var: arachnoideus Rke.

Atlas deutscher Meeresalgen. Taf: 21.

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Rhodochorton chantransiordes Rke.

Atlas deutscher Meeresalgen

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Taf! 22.

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Atlas deutscher Meeresalgen.

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Blastonhysa rhizonus Rke

Atlas deutscher Meeresalgen. Mae 2,

Fig. 1-4 Cladophora pygmaca Rke. Fig. 59. Epiecladia Flustrae Rke

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Taf.

Atlas deutscher Meeresalgen.

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Atlas deutscher Meeresalgen.

Im Auftrage des Königlich Preussischen Ministeriums für Landwirthschaft, Domänen und Forsten

herausgegeben ım Interesse der Fischerei

von der

Kommission zur wissenschaftlichen Untersuchung
der deutschen Meere.

Zweites Heft. Tafel 26 bis 50.

In Verbindung mit Dr. P. Kuckuck

bearbeitet von

Dr. J. REINKE.

Berlin.
Paul Parey.

1892.

Vorbemerkung zum zweiten Hefte.

Das zweite Heft des Atlas deutscher Meeresalgen bildet zugleich den Abschluss des
ganzen Werkes.

Von der Kommission ursprünglich auf sechs Hefte mit insgesammt ı50 Tafeln veranschlagt,
kann der Atlas wegen Mangel an Mitteln nicht fortgesetzt werden. Es musste daher auf die
Durchführung des grösseren Theiles unseres Programmes Verzicht geleistet werden.

Beim Druck des Textes ist vorgesehen, dass die Tafeln in systematischer Umordnung
des Ganzen zwischen die Textblätter eingebunden werden können. Das würde für das Werk
bei Vollendung seiner projectirten Ausdehnung von grossem Werthe gewesen sein, jetzt ist diese
Bedeutung eine geringere. Nebenbei dürfte es sich empfehlen, diesen Torso eines „Atlas‘‘ mit
der „Algenflora der westlichen Östsee‘‘, deren Text in engster Beziehung zum Atlas steht,
zusammenbinden zu lassen.

Um Entschuldigung nachzusuchen habe ich wegen Tafel 41, auf welcher die Figuren zweier
verschiedener Arten durcheinander gerathen sind. Die Schuld daran trägt der Umstand, dass
versehentlich die Dispositionsskizze bei Absendung der Originalzeichnungen an den Lithographen
zurückgeblieben war.

Möge das Werk immerhin einigen Nutzen stiften für die künftige Fortentwicklung der
Phycologie!

J. REINKE.

Inhalt von Heft 2.

Chorda Fılum L. sp.

Chorda tomentosa LYNGE. {
Isthmoplea sphaerophora HARV. sp. .
Stictyosiphon tortilis RUPR. sp. .
Spermatochnus paradoxus ROTH sp. .
Stlophora rhizodes EHRH. sp. .
Sttlophora tuberculosa FL. dan. sp.
Halorhiza vaga KÜTZ. i
Chordaria flagelliformis FL. a sp-
Chordaria divaricata AG.
Rhodochorton minutum SUHR sp. .
Ectocarpus Reinboldi RKE.
Pogotrichum filiforme RKE. .
Sphacelaria cirrhosa ROTH sp.
Sphacelaria racemosa GREV. var. archca HARV.
Sphacelaria olivacea PRINGSH. .
Sphacelaria plumigera HOLMES
Sphacelaria Plumula LANARD.

Stypocaulon scoparium L. sp. f. spinulosum en -

Chaetopteris plumosa KÜTZ. .

. 26, 27, 28.

29.
30.
„32.

33, 34, 35,

36.
37.
38,
39.
39.
40,
41.
41.
42, 43.
44, 45.
46.
47.
48,
48,
49, 50,

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35

Tafel 26, 27, 28 aum28

Genus Chorda STAcKH.

Thallus langgestreckt, unverzweigt, von radiäreınm Bau, im Querschnitt kreisförmig, hohl, von Haaren be-
deckt, mit einer Haftscheibe befestigt. Zellenvermehrung intercalar. Chromatophoren zahlreich, scheibenförmig,
zum Theil zuletzt bandartig erweitert. Mit Ausnahme des untersten Theiles wird die ganze Pflanze zuletzt von
einer gleichförmigen Schicht uniloculärer Sporangien bedeckt, zwischen denen grosse, sterile, assimilirende Zellen,
Assimilationsschläuche, stehen, welche mit den Sporangien gemeinsamen Basalzellen aufsitzen. Pluriloculäre Sporan-
gien unbekannt.

Chorda Filum L. sp.

Haare mit rudimentären, oft kaum erkennbaren Chromatophoren, daher meistens ganz farblos. Assimi-
jationsschläuche mit breit-keulenförmiger, abgestutzter Endigung die Sporangien übergipfelnd, in diesen Endigungen
mit vergrösserten, bandförmigen, sehr dicht gelagerten Chromatophoren ausgerüstet.

Vorkommen. Gesammte Küsten des nördlichen atlantischen Oceans. Nördliches Eismeer. Fructificirt
im Spätsommer.

Chorda tomentosa Lvnc».

Haare sehr lang, in allen Zellen mit vollkommen ausgebildeten, scheibenförmigen Chromatophoren, daher
braungelb. Assimilationsschläuche elliptisch oder ein wenig keulenförmig, nicht länger als die ungefähr ebenso ge-
stalteten Sporangien, mit spärlichen scheibenförmigen Chromatophoren, welche in Gestalt und Grösse mit den
übrigen Chromatophoren der Pflanze übereinstimmen.

Vorkommen. Europäische Küsten des nördlichen atlantischen Oceans. Fructificirt im Frühsommer.

Erklärung der Abbildungen.
Tafel 26. Chorda Filum.

Fig. 1. Stück aus der Mitte eines jüngeren, eben die Sporangien entwickelnden Fadens mit dem Ueber-
zug farbloser Haare. (4).

Fig. 2. Stück aus dem oberen Theile einer alten Pflanze, aufgetrieben-lufthaltig, mit deutlichem Hervor-
treten der spiraligen Drehung. (4).

Fig. 3. Basalstücke älterer Pflanzen, an einer Muschel haftend. (4).

Fig. 4. Schematischer Längsschnitt der Basis. Man sieht den eigentlichen Gewebekörper der Pflanze sich
nach Unten conisch verjüngen, während aus seiner Oberfläche kurze Hyphs »- »'%.%»2s wachsend hervortreten und
eine Haftscheibe bilden. (2?).

Fig. 5. Mittlerer Theil einer Pflanze im Längsschnitt, um den centralen, durch Diaphragmen gekammerten
Hohlraum zu zeigen. (2).

Fig. 6. Querschnitt durch den aus sehr festem Gewebe bestehenden, verdünnten, basalen, keine Sporangien
tragenden Theil einer alten Pflanze; e äusserste, oberhautartige Zellschicht; p dickwandiges Parenchym; h innere,
den Hohlraum begrenzende Hyphenschicht. (229).

Fig. 7. Querschnitt unterhalb der in Fig. 6 dargestellten Region durch das äussere Gewebe und den An-
fang der Haftscheibe; man sieht das starke Aufquellen der Aussenwände sowie einzelne durch sie hindurch-
wachsende quer getroffene Hyphen h. (62°).

Fig. 8. Querschnitt aus dem mittleren Theile einer älteren Pflanze, durch welchen ein Stück Diaphragma
frei gelegt wird; man sieht, dass letzteres aus horizontal verlaufenden, verzweigten Hyphen gebildet wird, welche
durch eine structurlose Gallerte mit einander verbunden sind (d). Bei h die vertical abwärts laufenden Hyphen,
p Parenchym. (22°).

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36

Fig. 9. Querschnitt durch ein fructificirendes Stück des Thallus.. h Hyphenschicht, p Parenchym, s die
Sporangienschicht, welche von den Assimilationsschläuchen a übergipfelt wird. Bei t ein Büschel von Haaren. (229).

Fig. 10. Längsschnitt aus der gleichen Region, Bezeichnungen wie in Fig. 9. (229).

Fig. 11. Chromatophorenhaltiges Hyphengeflecht, welches in älteren Pflanzen den inneren Hohlraum aus-
kleidet, von der Innenfläche gesehen. (22°).

Tafel 27. Chorda Filhum.

Fig. 1. Zusammenhang älterer primärer Hyphen mit kopfartig angeschwollenen Endigungen und spärlichen,
rudimentären Chromatophoren. (#29).

Fig. 2. Ursprung einer secundären Hyphe aus der innersten Parenchymschicht. (#29).

Fig. 3. Wachsendes Ende einer secundären Hyphe. (629),

Fig. 4. Längsschnitt aus der Mitte eines jungen Thallus. p Parenchym, a Rindenschicht; in der Zelle z
der letzteren ist eine Querwand aufgetreten. (32).

Fig. 5. Längsschnitt eines etwas älteren Stadiums. p Parenchym, a Rinde, letztere hat sich durch zahl-
reiche intercalare Theilungen in eine Gewebeplatte umgebildet, bei der die Längsaxe der Zellen senkrecht zur
Thallusaxe steht. ($29).

" Fig. 6. Längsschnitt eines weiter entwickelten Stadiums als Fig. 5. p Parenchym. a Zellen der Rinden-
schicht, welche sich noch weiter in die Länge strecken und hierbei durch Längsstreckung des Thallus auseinander-
weichen, wie man erkennt, wenn man in der Figur die mit a bezeichneten Zellen der Reihe nach von oben nach
unten durchmustert. Darauf zerfallen durch eine tangentiale Wand diese Zellen in den Assimilationsschlauch a’
und das Basalstück b, welch’ letzteres zwischen den immer weitere Abstände zeigenden Assimilationsschläuchen
zuletzt Vorwölbungen treibt. (32°).

Fig. 7. Schicht der jungen Assimilationsschläuche von der Aussenfläche betrachtet, um die Abrundung
derselben zu zeigen. (#29),

Fig. 8. Längsschnitt aus einem noch älteren Stadium. p Parenchym, b Basalstücke der ursprünglichen
Rindenschicht, welche von ihren Hervorwölbungen (vgl. Fig. 6 b) junge Sporangien s abgegliedert haben. s’ reifes
Sporangium, a ausgewachsene Assimilationsschläuche mit bandförmigen Chromatophoren. (1399).

Fig. 9. Schwärmsporen. (1299).

Fig. 10. Aus den Schwärmsporen entstanden, horizontale Vorkeime, A einzellig, B dreizellig. (129).

Tafel 28. Chorda Filum.

Fig. ı. Vierzelliger, horizontal dem Substrate angeschmiegter Vorkeim pr, aus welchem die beiden jungen
Thallome a und b vertical emporwachsen. (629),

Fig. 2. Ein wenig älterer Keim; pr Vorkeim, t terminales Haar. (2°).

Fig. 3. Ein noch etwas älterer Keim, in der Ausführung der Zeichnung schematisirt, um die Zellenfolge
erkennen zu lassen. Die Querwände erster Ordnung sind durch stärkere Linien und die Ziffer 1 gekennzeichnet ;
die intercalar gebildeten Querwände zweiter und dritter Ordnung sind zarter gehalten und entsprechend be-
ziffert. (629).

Fig. 4. Spitze einer Keimpflanze mit zwei Haaren. (62).

Fig. 5. Ursprung zweier seitlicher primärer Haare an einem Segmente desselben Pflänzchens, dem Fig. 4
entnommen wurde. (62°).

Fig. 6. Stück aus der unteren Hälfte des Thallus eines noch älteren Pflänzchen, um die Entwickelungsfolge
der primären Haare zu zeigen. (??9).

Fig. 7. Basis des Pflänzchens, dem auch Fig. 6 entnommen, (?2).

Fig. 8. Mittleres Stück eines etwas älteren Pflänzchens mit lebhafter intercalarer Theilung der Zellen und
Hervorsprossung der ersten secundären Haare. (32°).

Fig. 9. Noch älteres, gahzes Keimpflänzchen mit Andeutung der primären Haarwirtel. (#).

Tafel 29. Chorda tomentosa.
Fig. ı. Stück aus dem mittleren Theile des Thallus mit den langen, gelbbraunen, assimilirenden
Haaren. (4).
Fig. 2. Gliederzelle eines Haars, um die Chromatophoren zu zeigen.
Fig. 3. Ganz junges Pfänzchen, im Alter der Fig.9 Tafel 28 gezeichneten Keimpflanze von Chorda Filum
entsprechend. (#).

37

Fig. 4. Spitze des in Fig. 3 gezeichneten Pflänzchens, die Chromatophoren durchweg angedeutet.

Fig. 5. Querschnitt aus dem mittleren, fructifizirenden Thallus. h an den inneren Hohlraum angrenzende
Hyphenschicht. p Parenchym. a Assimilationsschläuche. s Sporangien. t assimilirende Haare. (22°).

Fig. 6. Kleines Stück eines solchen Querschnitts, stärker vergrössert. p Parenchym b Basalzellen der
Assimilationsschläuche und Sporangien. a Assimilationsschläuche. s Sporangien. s’ entleertes Sporangium. t Haar. (62°),

Bemerkungen.

Die Gattung Chorda repräsentirt einen besonderen, interessanten Typus unter den Phäosporeen, auf dessen
Eigenthümlichkeiten um so mehr hier näher einzugehen ist, als die 4 Tafeln nur eine Auswahl von Bildern aus
seiner Anatomie und Entwickelungsgeschichte zu bringen vermochten, mehr Raum aber nicht zur Verfügung stand.
Da die Entwickelung von Chorda Filum nahezu lückenlos vorliegt, so sei zunächst auf diese Art allein Rücksicht
genommen und dann Ch. fomentosa, von der die jüngsten Stadien nicht untersucht werden konnten, zum Ver-
gleich herangezogen.

a. Chorda Filum.

Die Schwärmspore von Chorda Filum enthält einen einzigen, schüsselförmigen Chromatophor, dem ein
linsenförmiger braunrother Pigmentfleck aufsitzt, an welchem die Cilien entspringen. (Taf. 27 Fig. 9). Die ohne
Copulation zur Ruhe gekommene Spore setzt sich an einen festen Gegenstand, z.B. eine Glasplatte, an, umgiebt
sich mit einer Zellwand und dehnt sich längst dem Substrate in einer Längsrichtung aus, wobei sich der Chroma-
tophor durch Theilung verdoppelt (Fig. 10 A). Dann tritt Quertheilung ein und es wird somit ein 3 bis 4 zelliges
Protonema gebildet, (Fig. 10 B), in dessen Zellen durch Theilung sich die Zahl der Chromatophoren vermehrt, und
in diesem Stadium verharrt die Keimpflanze im Spätherbst eine Reihe von Wochen!). Indem diese Protonema-
zellen in verschiedener Richtung Aussackungen treiben, erhält der Vorkeim dadurch ein verzweigtes Aussehen.

Aus einer oder aus zwei Zellen je eines Protonema wachsen dann aufrechtstehende Keimpflänzchen hervor.
Zunächst treibt die Protonema-Zelle eine Ausstülpung nach Oben, in welche ihre Chromatophoren hineinwandern,
dann gliedert sie diese Zelle, die Mutterzelle einer Chorda-Pflanze, durch eine Querwand ab. Durch intercalare
Quertheilung zerfällt diese Mutterzelle in eine kurze Zellreihe (Taf. 28 Fig. ı a). Die unterste Zelle dieses kleinen
Fadens bleibt in der Regel länger und durch geringere Zahl und Grösse der Chromatophoren blasser als die
oberen, sich lebhafter theilenden Zellen, diese fast farblose Basalzelle theilt sich aber in 2 bis 6 ebenfalls nahezu
farblos bleibende Zellen, die wir den Stiel des Keimpflänzchens nennen wollen (Fig. ı b, 2, 3), Noch während
der Keimling einreihig ist, wächst seine Spitzenzelle in ein gleichfalls farbloses Haar aus, welches durch Quer-
theilung mehrzellig wird und zuletzt lediglich durch Quertheilung seiner Basalzellen sich verlängert (Fig, ı b, 2, 3)
wie das für die Phäosporeenhaare im Allgemeinen typisch ist. In den drei unterhalb der Haarspitze gelegenen
Zellen des Keimlings treten dann radiale Längswände auf, und zwar zunächst zwei sich kreuzend in jeder Zelle,
so dass diese in 4 Quadranten zerfällt. (Fig. ı b, 2). Darauf theilt sich jeder Quadrant durch eine zweite radiale
Längswand, so dass 8 Zellen sich um die Längsaxe des Keims gruppiren, während die unterhalb dieses mehr-
reihigen Abschnitts liegenden Zellen noch einreihig bleiben und sich durch Querwände vermehren (Fig. ı b, 2, 3,
auch letztere Figur ist eine Oberflächenansicht). Aus der obersten durch Längstheilung gespaltenen Zelle kann
dann auch ein zweites Gipfelhaar hervorwachsen (Fig. 4). Nachdem die 8 Zellen eines Stockwerks in der Regel
sich noch einmal quer getheilt haben, sprosst aus dem obersten Stücke dieser Zellen ein seitlich stehendes Haar
hervor, so dass die junge Pflanze mit wirtelig stehenden, primären Haaren geschmückt erscheint (Fig. 5, 6, 9), doch
verzögert sich das Auftreten dieser primären Haarwirtel auch oft bis zu einer späteren Entwickelungsphase, und in
den unteren Theilen der Pflanze ist dies durchgehend der Fall (Fig. 6). Dann zerfallen die erst durch Streckung
verlängerten Zellen durch weitere Quertheilung in kürzere Zellen, jetzt treten tangentiale Wände auf, wodurch das
Gewebe zweischichtig wird, und nun wechseln Quertheilung, Radialtheilung und Tangentialtheilung immer lebhafter
ab, so dass ein kleinzelliges Parenchym entsteht (Fig. 6, 8). Bereits vorher waren alle ursprünglichen Stockwerke
des Keimlings bis zum farblosen Stiel hinab mehrreihig geworden, und selbst hier treten einzelne Längswände in
den obersten Zellen auf. Doch kann man sagen, dass, trotzdem intercalare Ouertheilung jetzt in allen Zellen der
Keimpflanze stattfindet, doch in dieser Phase die Entwickelung eine basiskope Richtung inne hält, was u. A. auch
durch die Entwickelungsfolge der Haare (Fig. 6) angezeigt wird.

') Es gelang nicht, in den Culturen auf Glasplatten die Entwickelung des Protonema’s weiter zu fördern. Dagegen wurden alle fol-
genden Keimungsstadien in reichster Auswahl dadurch erzielt, dass in ein Gefäss, in welchem alte Exemplare von Chorda Filum reichlich
Schwärmsporen entliessen, Delesseria sinuosa eingesetzt ward, auf deren Blättern sich ‚die Keimpflänzchen während der Wintermonate langsam
fortentwickelten.

Dann vertheilt sich aber das Längenwachsthum durch intercalare Quertheilung der Zellen immer gleich-
mässiger über den ganzen Thallus, wie die gleich grossen Abstände der primären Haarwirtel schon zum Ausdruck
bringen (Fig. 9). Inzwischen geht das Protonema vollständig zu Grunde, dafür entspringen aus dem obersten,
mehrreihigen Stücke des Stiels und später aus den darüber gelegenen Oberflächen-Zellen zahlreiche, mehrzellige
Wurzelhaare, die zuletzt eine dicht verfilzte, konische Haftscheibe bilden; das unterste Stück des Stiels ist
zwischen den seitlich hervorgesprossten Wurzelhaaren noch deutlich erkennbar, seine unterste Zelle wächst eben-
falls in ein Wurzelhaar aus (Fig. 7 unten).

Durch ziemlich gleichmässig intercalare Zelltheilung und durch Streckung der gebildeten Zellen wächst die
Pflanze so von wenigen Millimetern zu einer Länge von 0,10 bis 4 Metern heran; von einem localisirten Vege-
tationspunkt kann nicht die Rede sein, wenigstens nicht in den hauptsächlichsten Stadien des Längenwachsthums
der Pflanze; dass an ganz jungen Keimlingen die unter den ersten längs getheilten Zellen liegenden noch ein-
zelligen Segmente sich mit gesteigerter Lebhaftigkeit quer theilen, ward bereits hervorgehoben.

Schon an ganz jungen Pflänzchen macht sich ein Obliteriren der Spitze bemerklich, indem hier die Zellen
früher ihre Entwickelungsfähigkeit einbüssen als in den mittleren Abschnitten des Thallus. Von einem Pflänzchen
des in Fig. 9 (Taf. 28) gezeichneten Entwickelungszustandes dürfte 4 bis 5 der ganzen Länge von der Spitze an
gerechnet, aus nicht weiter entwickelungsfähigem Gewebe bestehen, welches niemals zur Fructification gelangt.

Die weitere Gewebebildung der Pflanze wird dadurch beeinflusst, dass (wenn wir fortan von der obli-
terirenden äussersten Thallusspitze absehen) nur der längere obere Theil der Pflanze später fructificirt, der untere,
kürzere dagegen lediglich als Träger oder Fuss des fructilen Thallus dient. Der sterile Thallusfuss besitzt meistens
die Länge von ungefähr ı0 bis 20 Centimeter, kann aber kürzer oder länger sein. Wie der ganze Thallus, so ist
auch der Fuss von einem axilen Hohlraum durchzogen, welcher sich bis in die Haftscheibe hineinzieht. In Fig. 6
Taf. 26 ist ein Theil des Ouerschnittes von einem ausgewachsenen Thallus-Fuss gezeichnet.

Zu äusserst befindet sich eine mit e bezeichnete Zellschicht, deren Zellen radial gestreckt, deren äussere
Wände stark verdickt und geschichtet sind; das Lumen dieser Zellen ist abgerundet. Darunter liegt eine theil-
weise unterbrochene Schicht kleiner Zellen mit ebenfalls rundlichem Lumen; beide Schichten zusammen mögen
als Rinde bezeichnet werden. Darauf folgt ein Gewebe prismatischer, im Querschnitt polygonaler Zellen mit stark
verdickten, eine Mittel-Lamelle scharf hervortreten lassenden Wänden, es ist mit p bezeichnet und mag kurzweg
das Parenchym der Pflanze heissen. Darauf, dass in den dauernd von Protoplasma erfüllten Zellen dieses Ge-
webes Stoffaustausch stattfindet, wird durch die in den Wänden vorhandenen Tüpfel hingewiesen. Der Querdurch-
messer der Parenchymzellen wächst von den äusseren gegen die mittleren Schichten und nimmt wieder ab gegen
die innersten Schichten. Die Stärke der Wände ist mechanisch motivirt dadurch, dass der Fuss als Träger der
ganzen Pflanze zu dienen hat, und dass die Wasserbewegung auf diesen Theil der Pflanze gleichsam durch den
längsten Hebelarm einwirkt. Die innerste Gewebslage h sind wieder kleine, durch eine gallertartige Zwischensubstanz
verbundene Zellen, es sind das Ouerschnitte der inneren Hyphen, welche die Wand des Röhrenlumens überziehen ;
darauf folgt der Hohlraum selbst.

Nach unten geht der Fuss in die Haftscheibe über (Taf. 26 Fig. 4), welche dadurch zu Stande kommt,
dass wurzelhaarartige, septirte Hyphen den äusseren Zellen des Thallus entspringen und dicht gedrängt nach ab-
wärts wachsen (vgl. auch Taf. 28 Fig. 7). Die oberen dieser Hyphen bahnen sich durch die gallertartig verdickten
Wände der Aussenrinde hindurch einnen Weg. (Taf. 26 Fig. 7h.) Das Lumen der Thallusröhre spitzt sich nach
unten conisch zu, was in der Skizze Fig. 4 nicht dargestellt worden ist, weil diese Endigung des Lumens oberhalb
derselben eintritt. Die inneren Hyphen werden nach Unten spärlicher, sie nähern sich dabei einander immer
mehr und bilden zuletzt einen dünnen exilen Strang, der ein Wenig unterhalb der Ursprungszone der obersten
äusseren Hyphen endigt.

Gehen wir weiter an der Pflanze empor zu dem oberen Thallusabschnitt, so finden wir diesen dicht mit
farblosen, meist büschelig stehenden Haaren und dazwischen mit Sporangien s bedeckt (Taf. 26 Fig. ı, 9, 10).
Indem wir von der Bildung dieser Sporangien einstweilen absehen, sei nur bemerkt, dass die Sporangienschicht
und die darunter gelegene kleinzellige Schicht (Fig. 9) der mit c bezeichneten Schicht des Fusses entspricht.
Das Parenchym (Fig. 9, 10) ist zartwandiger als im Fuss (Fig. 6), in seinen Zellen sind überall kleine Chromato-
phoren vorhanden, auch die Tüpfel der Wände sind reichlich entwickelt'). Die ganze Thallusröhre ist in
regelmässigen Abständen durch zarte Septa gefächert. (Fig. 5); Die Hyphenschicht (Fig. 9, 10h) lässt zweierlei
verschiedene Hyphen unterscheiden, die Kürze halber primäre und secundäre Hyphen heissen mögen. Die primären
Hyphen laufen vertical abwärts, sie sind wegen der in ihnen enthaltenen sehr kleinen und rudiementären Chromato-

t) Vgl. auch Wırre, Bidrag til Algernes physiologiske Anatomie (Stockholm 1885) S. 19, Taf. ı, Fig. 7—10.

phoren fast farblos, ihre Endigungen sind kopfartig angeschwollen (Taf. 27 Fig, ı) '). Die secundären Hyphen,
welche man auf der ganzen Strecke den innersten Parenchymzellen entspringen sieht, (Taf. 27 Fig. 2, 3), sind
kürzer, reich verzweigt, mit grösseren Chromatophoren ausgestattet und verlaufen in allen Richtungen über die
primären Hyphen hinweg (Taf. 26 Fig. ıoh, Fig. ı1 eine Flächenansicht der Innenwand der Thallusröhre). Diese
secundären Hyphen bilden auch die Septa, indem eine dünne Schicht derselben quer durch die Röhre hindurch-
wächst, wobei die Zwischenräume zwischen den Hyphen von Gallerte ausgefüllt erscheinen (Taf. 26 Fig 8).

Was nun die Entwickelungsgeschichte dieser Gewebesysteme anlangt, so wollen wir wieder anknüpfen an
das Stadium der Keimpflanze, in welchem die durch intercalare Quertheilung des noch einreihigen Thallus ent-
standenen Segmente durch folgende Längstheilung in 8 um die Axe gelagerte Zellen zerfielen. (Taf. 28 Fig. 3).
Da bei der Keimpflanze zweifelsohne die jüngsten Stadien an der Basis des Thallus liegen, so ist auf dieser
Entwickelungsstufe der Pflanze das Basalstück für das Studium der Entwickelungsgeschichte am meisten geeignet.
Eine solche Basis zeigt, wie schon oben ausgeführt, zunächst, wie die primären, in Wirteln stehenden Haare sich
in basiskoper Richtung entwickeln; ganz unten hört die Haarbildung auf (Fig. 6, 7, Taf. 28). Oberhalb der Basis
lässt sich nun an optischen Längsschnitten aufgehellter Präparate leicht erkennen, wie auf die 8 Radialwände
dann eine tangentiale Theilung folgt, durch welche der Thallus zweischichtig wird, und dass dann die centralen
Zellen sich rascher quer theilen, kürzer werden und somit die Rinde bilden, während in den centralen Zellen die
Ouertheilung langsamer eintritt, die Zellen relativ länger werden, dafür aber durch weitere radiale und tangentiale
Längstheilung das Grund-Parenchym der Pflanze aufbauen. Bald nachdem das Parenchym zweischichtig ge-
worden, weichen die in der Axe zusammenstossenden inneren Zellen hier auseinander, wodurch der Anfang des
somit schizogenen, zunächst von einer stark lichtbrechenden Gallerte erfüllten Hohlraums entsteht; die Gallerte ist
Quellungsproduct der Zellwände. Auf einer Entwickelungsstufe, die wenig älter ist, als Fig. 6 Taf. 28; sieht man
dann den innersten Zellen des Parenchyms bereits primäre Hyphen entspringen, welche vertical im axilen Raume
abwärts wachsen, auch ihrerseits später auseinander weichen und so der axilen Röhre Raum gewähren. Auf
einer Stufe, wie Fig. 8 (Taf. 28), welche einem etwa 10 Centimeter langen Exemplare entnommen ist, zeigen
sich die Gewebe auf dem OQuerschnitte bereits im Wesentlichen so ausgebildet wie auf dem Ouerschnitte
einer erwachsenen Pflanze, die Elemente vergrössern sich dann nur hauptsächlich durch Streckung, während die
Rindenschicht noch in andauernder lebhafter Theilung verharrt. Hierbei kann man auch die Weiterentwickelung
der Haarbekleidung verfolgen. Die primären Haare (Taf. 28 Fig. 6) scheinen sämmtlich zu Grunde zu gehen,
dafür entwickeln sich secundäre Haare, anfangs vorwiegend in den Zonen der primären Haarwirtel, (Fig. 8), zuletzt
jedoch über die ganze Oberfläche zerstreut und dann meist in Büscheln beisammenstehend (Taf. 26 Fig. 9, 10).
Die Quertheilungen der Rindenzellen sind jetzt aber gleichartig über die Thallusfläche vertheilt, und wenn es
manchmal den Anschein hat, als seien die Zellen der Basis ein wenig abweichend gestaltet, so hängt dies zweifellos ab
von der beginnenden Gewebedifferenzirung des Thallusfusses. Von einem basalen Vegetationspunkte der Pflanze
möchte ich wenigstens auf dieser und auf späteren Entwickelungsstufen nicht sprechen, wenn auch die ganze Ent-
wickelung der Pflanze basalwärts erlischt, und daher auf einer gewissen Stufe hier die jungen Rindenzellen am
kürzesten sind. Man findet aber längs des ganzen Thallus Strecken lebhafteren und weniger lebhaften intercalaren
Wachsthums mit einander wechseln. Bemerkenswerth ist noch, dass schon auf dieser frühen Entwickelungsstufe
sich die spiralige Drehung des Thallus-Gewebes bemerklich zu machen beginnt, welche zuletzt, an alten Pflanzen,
auch makroskopisch deutlich hervortritt (Taf. 26 Fig. 2).

Schwierig ist es, bezüglich der Entstehung der Septa in der Thallusröhre ins Klare zu kommen (Taf. 26
Fig. 5). Dieselben werden, wie schon oben bemerkt, durch eine transversal verlaufende Schicht secundärer Hyphen
gebildet. Ich vermuthete anfangs, dass in ganz jungen Pflanzen der ganze Hohlraum mit solchem quer verlaufen-
den Hyphen-Geflecht angefüllt sein würde, dass dann durch Streckung des Thallus die Hohlräume entständen, in-
dem das Hyphen-Geflecht auf die Septa reducirt würde. Diese Muthmassung bestätigte sich nicht. Man findet zu
Anfang der Röhrenbildung nur längslaufende Hyphen erster Ordnung, dieselben weichen auseinander, es entsteht
der axile Hohlraum und erst zuletzt treten die Septa in demselben auf, welche also wohl nur dadurch zu Stande
kommen können, dass in ziemlich constantem Abstande secundäre Hyphen quer durch das Lumen der Röhre hin-
durch wachsen. Es gelang auch, Stadien zu finden, in denen stellenweise ein derartiges Aussprossen secundärer
Hyphen aus der Röhrenwandung sich erkennen liess.

Das Lumen der Röhre ist anfangs von Gallerte, später von wässriger Flüssigkeit erfüllt, zuletzt kommt
es, unter Bildung mehr oder weniger ausgedehnter Auftreibungen (Taf. 26 Fig. 2) zur Ausscheidung von Gasen im
Innern, so dass in diesem Falle die losgerissene Pflanze an der Oberfläche des Wassers zu schwimmen vermag.

1) Vel, WILLE, l.c. S. 74, Taf. 6 Fig. 68—70.
g

40

Der assimilirende Apparat der jüngeren Pflanze besteht aus kleinen rundlich-scheibenförmigen Chro-
matophoren, welche in grösserer Zahl in den Zellen vorhanden sind. (Taf. 27 Fig. 4; vgl. auch Taf. 28 Fig. 1—5).
Diese Chromatophoren sind in den Zellen der Rindenschicht am zahlreichsten und dichtesten, man findet sie aber
in geringerer Zahl und etwas geringerer Grösse auch noch durch das ganze Parenchym zerstreut und in den
secundären Hyphen (Taf. 27 Fig. 5, Fig. 2, 3; Taf. 26 Fig. 10; Fig. ı1). Am spärlichsten sind sie in den nahezu
farblosen primären Hyphen enthalten, hier sind sie auch klein, rudimentär, schwach gefärbt, in Fig. ı Taf. 27 noch
etwas zu scharf hervorgehoben. Die Haare enthalten gewöhnlich in ihren Basalzellen einige ganz kleine schwach
gelblich gefärbte Chromatophoren.

Die Pflanze assimilirt in den Stadien lebhaftesten Wachsthums also nahezu durch alle Zellen, am leb-
haftesten natürlich durch die Rinde. Wenn aber letztere beginnt, sich zur Bildung der Sporangialschicht anzu-
schicken, so treiben die Rindenzellen vorher eigenthümliche Auswüchse, die ganz speciell der Assimilation an-
gepasst sind, und welche ich darum Assimilationsschläuche!') nennen will.

Diese Assimilationsschläuche sind keulenförmige, oben abgestutzte Zellen, welche einen continuirlichen
Ueberzug über den ganzen fertilen Theil des Thallus bilden und hierbei die Sporangien übergipfeln, welche
zwischen den schmäleren Basalstücken der Assimilationsschläuche stehen. (Vgl. Taf. 26 Fig. 9, 10; Taf. 27 Fig. 8,
in diesen Figuren sind die Assimilationsschläuche mit a, die Sporangien mit s bezeichnet).

Von der Fläche gesehen erscheinen die Assimilationsschläuche mehr weniger kreisrund oder etwas zu-
sammengedrückt, sie lassen von Flüssigkeit erfüllte Hohlräume zwischen sich (Taf. 27 Fig. 7). Ihre abgestutzt-
keulenförmige Gestalt tritt auf dem Quer- oder Längsschnitt des Thallus hervor (Fig. 8a), hier sieht man auch,
dass die Chromatophoren aus dem unteren, stielartigen in den oberen breiteren Theil des Assimilationsschlauches
eingewandert sind, wo sie nicht allein sich sehr dicht an einander legen, sondern auch durch Wachsthum zuletzt
eine bandförmige Gestalt annehmen.

Die Entwickelung der Assimilationsschläuche ist mit der Entwickelung der Sporangien zusammen in's Auge
zu fassen, da beide eng mit einander verknüpft sind und die Assimilationsschläuche auch die Nebenfunktion er-
füllen, als Schutzapparat der jungen Sporangien zu dienen.

Die Entwickelungsgeschichte der Schlauchschicht — so möge Kürze halber die aus Assimilationsschläuchen
und Sporangien gebildete Schicht hier genannt sein — lässt sich am bequemsten auf Längsschnitten verfolgen,

wobei das Uebersichtsbild des fertigen Zustandes (Taf. 26 Fig. 10) Berücksichtigung finden mag.

Der erste Anfang zur Bildung der Schlauchschicht giebt sich darin zu erkennen, dass in den an sich schon
kürzeren Rindenzellen erneut Querwände auftreten (Taf. 27 Fig. 4 z), welche sehr bald an Zahl zunehmen (Fig. 5 a) ?)
und hierbei mit radialen Längswänden wechseln, so dass die Zellen pallisadenförmig werden, eine zur Thallus-
oberfläche normal stehende Längsaxe erhalten.

Diese pallisadenförmig gewordenen Rindenzellen wachsen nunmehr ganz vorwiegend in Richtung ihrer
neuen Längsaxe, wobei sie sich nach vorne und gegeneinander abrunden, so dass von Flüssigkeit erfüllte Intercellular-
räume zwischen ihnen entstehen (Fig. 6a, die Entwickelungsfolge geht von oben nach unten). Darauf theilen sich
durch eine zu ihrer Längsaxe senkrechte Wand die Zellen a in eine längere vordere Zelle (Fig. 6a’) und eine
kürzere hintere Zelle (Fig. 6b), a’ ist der junge Assimilationsschlauch, dessen Chromatophoren schon jetzt sich
bandförmig zu strecken beginnen, b möge die Basalzelle heissen, die Summe der Basalzellen bildet die einfache,
zwischen Schlauchschicht und Grund-Parenchym sichtbare Rindenschicht (vgl. Taf. 26 Fig. 10).

Die nächste Entwickelungsphase, welche auch aus dem unteren Theil der Fig. 6 Taf. 27 erkennbar ist, be-
steht nun darin, dass die Basalzellen (Rindenzellen) mit dem gesammten Thallusgewebe sich parallel zur Thallusaxe
in die Länge strecken. Hierdurch werden die Assimilationsschläuche (Fig. 6a’, Fig. 8a) von einander dislocirt, sie
zeigen erst wieder eine Annäherung durch die keulenförmige Verbreiterung des oberen Theils. Die Basalzellen
treiben nunmehr Ausstülpungen zwischen die Assimilationsschläuche hinein (Fig. 6b), diese Ausstülpungen runden
sich eiförmig und trennen sich durch eine Scheidewand ab, die nunmehr als Zellindividuen abgegliederten Auswüchse
der Basalstücke sind junge Sporangien (Taf. 27 Fig. 8s). In den jüngsten Sporangialanlagen findet man meistens

nur 2 bis 4 Chromatophoren, diese vermehren sich durch Theilung auf 16 bis 24, um jeden Chromatophor — die
Zellkerne sind schwer erkennbar — arrangirt sich zuletzt eine Schwärmspore. Auf den früheren Entwickelungs-

stufen ist dabei das Protoplasma nebst den Chromatophoren anf den vorderen Theil des Sporangiums zusammen-

') In der älteren Literatur meist als Paraphysen bezeichnet. Man sollte seiner Vieldeutigkeit wegen das Wort Paraphysen aus der
Nomenclatur der Phäosporeen ausschliessen,

2) Auf Taf. 27 sind in Fig. 5 die Wände des mit p bezeichneten Parenchyms zarter dargestellt, als in den correspondirenden Figuren 4,
6 und 8; es kommt dies daher, weil Fig, 5 dem oberen Theile eines Thallus entnommen wurde, wo im Allgemeinen die Wände dünner sind,
als im unteren,

41
gedrängt, während der hintere grössere Theil von einer grossen Vacuole eingenommen wird. Erst später vertheilen
sich die Chromatophoren mehr gleichförmig in der Peripherie des ganzen Sporangiums, nur an der Basis bleibt: oft
bis zuletzt eine kleinere Vacuole bestehen. Zuletzt verdickt sich die Zellwand stark über dem Scheitel des Sporan-
giums (Fig. $s’) und hier bildet sich durch Verflüssigung ein Loch, durch welches die Schwärmer austreten.

Die Entwicklung der Schlauchschicht schreitet im Grossen und Ganzen in basiscoper Richtung vor.

b. Chorda tomentosa.‘

Diese höchstens die Länge von ı—2 Meter erreichende Art ist vielleicht die schönste braune Alge der
europäischen Meere. ' Der federartige Habitus wird hervorgerufen durch die Bekleidung des oberen Thallus mit
langen goldgelben Haaren (Taf. 29 Fig. ı); in einer Ausdehnung von 2 bis 5 Centimetern ist der Fuss älterer
Pflanzen frei von diesen Haaren.

Durch den Chromatophoren-Gehalt der Haare, wie durch das assimilirende System im Allgemeinen unter-
scheidet sich Chorda Tomentosa hauptsächlich von C%. Filum. In den Haaren finden sich die gleichen Chromato-
phoren in grosser Anzahl wie in den Rindenzellen. (Taf. 24 Fig. 2, Fig. 4, Fig. 6t und b). Weil die Haare länger
sind, als bei CA. Frlum, so bilden sie den hauptsächlichsten Assimilations-Apparat der Pflanze. In Correlation dazu
sind die den Assimilationsschläuchen von C%. Fzlum morphologisch äquivalenten Zellen, die wir darum auch bei
Ch. tomentosa Assimilationsschläuche nennen wollen, wenig als Assimilationsorgane entwickelt, der Name würde,
wenn man von Ch. fomentosa ausgehen wollte, gar nicht so zu bilden sein. Sie sind (Fig. 6a) nicht länger als die
Sporangien (Fig. 6s), von ganz ähnlicher elliptischer, etwas keulenförmiger Gestalt wie diese, die starke Ver-
breiterung des Vorderendes unterbleibt und die Chromatophoren sind von gleicher Form, wie in den Basalzellen
(Fig. 6b), dazu in relativ geringer Zahl vorhanden.

Schon ganz junge Pflanzen von weniger als ı0 Millimeter Länge tragen die langen gelben Assimilations-
haare, im Uebrigen zeigen sie analoges Verhalten, wie die jungen Pfänzchen von Chorda Filum: Die Haare
stehen Anfangs in Wirteln, zwischen denen später zerstreut und meist einzeln secundäre Haare erscheinen, (Taf. 29
Fig. 3), die Spitze des jungen Thallus obliterirt (Fig. 4), die Zelltheilung ist intercalar, basipetal erlöschend. Einige
untergeordnete anatomische Differenzen sind noch vorhanden. So finden sich Hyphen auf der Innenseite der hohlen
Thallusröhre in viel geringerer Zahl (Taf. 29 Fig. 5 h) als bei Ch. Filum, es sind primäre Hyphen. Auch ist der
Hohlraum nicht durch eigentliche Septa gekammert, dagegen findet man von Strecke zu Strecke einen Pfropf aus
hyalinem Schleim in der Röhre, gleichsam ein unvollkommenes Septum. Das Lumen der Parenchymzellen ist im
Querschnitt abgerundet (Fig. 5).

c. Die ganze Gruppe.

Die Gattung Chorda mit ihren beiden Arten !) repräsentirt einen eigenartigen Typus unter den Phäosporeen,
über dessen systematische Stellung die Ansichten der Autoren weit auseinander gegangen sind. HARVEY?) ver-
einigt Chorda Filum mit Scytosiphon lomentarius in eine Gattung, wobei allerdings seine Diagnostik eine sehr
fehlerhafte ist, indem z. B. die Assimilationsschläuche als Sporen beschrieben werden. KÜTZING °) bildet eine
besondere Familie der Chordeae, wozu er ausser Chorda auch Spermatochnus (Stilophora) und Halorhiza rechnet,
Gattungen, die gewiss nur wenig Beziehungen zu Chorda haben. ]. AGARDH?) stellt Chorda Filum als Art zum
Genus Scyzosiphon, kommt also im Wesentlichen mit HARVEY’S Auffassung überein. THURET) stellt Chorda zu
den Chordarieae. GOBI°®) hat dann, wie es scheint auf Veranlassung von ROSTAFINSKI, Chorda zu den Lamı-
narieae gestellt, und darin sind ihm Hauck ?) und KJELLMAN °) gefolgt. Ich selbst) habe den Chorda-Typus als
besondere, aber monotype Unterfamilie der Chordeae neben die ScyZosiphoneen gestellt, und ich glaube, dass durch
dies Auseinandergehen der Meinungen bewiesen wird, wie schwer es ist, einen Typus an andere Typen mit Sicher-
heit anschliessen zu können, wenn derselbe morphologisch isolirt da steht und Bindeglieder fehlen.

1) ArEsCHoUG beschreibt (Observationes phycologicae III. S. 15) noch eine Chorda abbreviata, welche aber nur einmal gefunden
wurde, und zwar in Fischernetzen bei Stockholm. — Nach der Beschreibung des Autors scheint es sich mir um eine in die östliche Ostsee
verschlagene Form von C%7. fomentosa zu handeln, welche dort vielleicht unbedeutende Abänderungen erfahren hat.

2) Phycologia britann. I Taf. 107.

3) Species Alg. S. 547.

4) Species Genera et Ordines Algarum 1]. S. 125.

5) In LE Jorıs Liste ete. S. 15.

6) Algenflora des weissen Meeres S. 74 Anm. 4.

?) Meeresalgen S. 394.

8) Skandinaviens Hafsalgflora S. 18 fl.

9) Algenflora der westlichen Ostsee S. 36 ff,

42

Wir wollen zunächst einmal untersuchen, welche Umstände für und welche gegen eine Vereinigung von
Chorda mit den Laminarieen sprechen.

Für die Vereinigung sprechen offenbar die zwei Umstände a, dass C/orda lediglich uniloculäre Sporangien
besitzt; b, dass diese Sporangien, an Gestalt denen von Zaminaria gleich, gemeinsam mit assimilirenden Schläuchen,
und mit diesen untermischt, den Rindenzellen entspringen; dies geschieht auch bei den Zaminarieen!).

Dagegen bestehen folgende Verschiedenheiten :

a) Bei Chorda besitzt der radiär gebaute Thallus während des Wachsthums intercalare Zelltheilung
nahezu gleichförmig über den ganzen Thallus vertheilt, während die stets bilateral gebauten
Laminariaceen, wenn wir von den Keimpflanzen absehen, durchweg einen localisirten, wenn gleich aus-
gedehnten Vegetationspunkt erkennen lassen.

b) Bei Chorda bedeckt die Sporangialschicht gleichförmig den ganzen Thallus mit Ausnahme des Fusses ;
bei den Zaminariaceen bilden die Sporangien circumscripte Sori.

c) Der in den verschiedenen Gattungen hervortretende Typus der Zaminariaceen entfernt sich beträchtlich
durch seine morphologische Differenzirung von Chorda.

Man wird mir vielleicht einwenden, dass, wenn ich in den /unctarieen, Asperococceen und Scytosiphoneen
radiäre und bilaterale Formen unbeanstandet beisammen stehen lasse, ich dies auch bezüglich der Zaminariaceen
thun sollte. Dagegen ist zu erinnern, dass in der Systematik das gleiche Merkmal in verschiedenen Gruppen nicht
immer den gleichen Werth besitzt, und es kommt sehr darauf an, wie es durch anderweite Merkmale unter-
stützt wird.

Was die Beziehungen von Chorda zu Scytosiphon anlangt, so ist der einzige wesentliche Unterschied darin
gegeben, dass Chorda nur uniloculäre, ScyZoszphon nur pluriloculäre Sporangien trägt. Aber die pluriloculären
Sporangien entspringen bei Scytosiphon ebenso aus den Rindenzellen, wie bei Chorda, sie sind bei ScyZoszphon mit
ganz ähnlichen, einzelligen Schläuchen gemengt, wie bei Chorda, sie sind gleichförmig über den Thallus verbreitet,
dessen Wachsthum das gleiche ist, wie bei Chorda. Würde Chorda ausser den bekannten uniloculären Sporangien
auch mit solchen pluriloculären Sporangien vorkommen, wie sie ScyZoszphon trägt, ich würde kein Bedenken tragen,
beide in eine Gruppe zusammenzustellen. Auch das neuerdings von KJELLMAN °) entdeckte aber noch wenig be-
kannte Genus Physematoplea, welches Seytossphon nahe steht, aber ausser Individuen mit pluriloculären auch
solche mit uniloculären Sporangien producirt, scheint mir für die Verwandschaft von Chorda und Scytosiphon
zu sprechen.

Ich bleibe darum vorläufig bei meiner Ansicht stehen, dass Chorda einen selbstständigen Typus (Chordeae)
repräsentirt, der sich zunächst an die Seyzoszphoneae anschliesst, vermuthlich mit diesen einer gemeinsamen Wurzel
entsprungen ist. Ich leugne aber auch keineswegs, dass die Zaminariaceae unter allen Phäosporeen zu den
Chordeae und den Scytosiphoneae die nächsten Beziehungen haben und vielleicht mit diesen eine gemeinsame,
untergegangene Wurzel besitzen.

Vorläufig fehlt es aber leider an jeder Handhabe, hierüber etwas Bestimmtes zu ermitteln, und speculative
Betrachtungen führen, wenn es sich um phylogenetische Beziehungen handelt, selten zu einem befriedigenden Re-
sultate. Das zeigt sich schon, wenn man versucht, auf dem Wege der Vergleichung Anhaltspunkte dafür zu ge-
winnen, ob Chorda tomentosa sich aus Ch. Fılum abgezweigt habe, oder umgekehrt, oder ob beide von einer
dritten, untergegangenen Art abstammen. Einige kurze Bemerkungen mögen darüber noch gestattet sein.

Was zunächst die geographische Verbreitung anlangt, so ist das Vorkommen von C%. fomentosa ein viel
beschränkteres, als das von Ch. Filum. Die letztere Art findet sich zerstreut durch das ganze nördliche Eismeer
(mit Ausnahme der pflanzenarmen Sibirischen See), tritt dann in grösster Menge auf an den atlantischen Küsten
Skandinaviens, Dänemarks, Deutschlands, Englands, Frankreichs (bei Brest noch gemein), geht auch tief in die
salzarme östliche Ostsee hinein. Gemein ist sie auch an der atlantischen Küste von Nordamerika. Chorda tomen-
tosa hingegen überschreitet von der Skandinavischen Küste nach Norden kaum den Polarkreis, sie ist dann stellen-
weise häufig an den West-Skandinavischen Küsten, ebenso auf Helgoland, findet sich noch im salzreichsten Theile
der westlichen Ostsee und wird selten an den englischen und französischen Küsten, in Nordamerika fehlt sie. Sie
ist viel weniger verbreitet, weniger eurytherm und weniger euryhalin als Ch. Fılum.

Hieraus könnte man schliessen, dass Ch. /omentosa erst später und local sich aus Ch. Fzlum entwickelt
und noch nicht die Verbreitung der letzteren Art erreicht habe. Man kann aber auch umgekehrt schliessen :

!) Vgl. Tuurer, Recherches sur les zoospores Ann, d. sciences nat. 3 Serie. Tome 14 Taf. 30. Vgl. namentlich auch den Text S. 31.
— In dieser Abhandlung (1851) stellt Tuurer, offenbar wegen der Fructification, Ckorda ebenfalls zu den Zaminarieen, eine Auffassung, die er
später geändert hat, da sein System der Algen in Le JoLıs Liste aus dem Jahre 1863 datirt.

2) Handbok S. 60,

Ch. tomentosa ist die ältere, aber im Aussterben begriffene Form, weil die jüngere Ch. Filum besser den Lebens-
bedingungen der Jetztzeit angepasst ist. Und nichts kann uns hindern, anzunehmen: Es existirte eine Ur-Chorda,
diese spaltete sich gleichzeitig in C%. fementosa und Fülum, wovon die letztere sich vermöge ihrer dafür geeigneteren
Organisation ein grösseres Verbreitungsgebiet eroberte.

Berücksichtigt man die morphologischen Charactere beider Arten, so sind wiederum die drei Möglichkeiten
vorhanden.

a) Ch. Filum ist die ursprüngliche Art, weil sie die gewöhnlichen, farblosen Phäosporeenhaare trägt. Sie
entwickelte ihre, dem Zweck vorzüglich angepassten Assimilationsschläuche in Ermangelung anderer
Assimilationsorgane. Ch. fomentosa bildete sich aus Ch. Filum heraus, indem die Zellen der Haare sich
dicht mit assimilirenden Chromatophoren erfüllten, in Wechselbeziehung damit die Assimilationsschläuche
verkümmerten, weil sie überflüssig wurden.

b) Ch. tomentosa ist die ursprüngliche Art, denn die zwischen den Sporangien stehenden Schläuche sind
nach Form und Inhalt von den gewöhnlichen Rindenzellen der Phäosporeen wenig verschieden. Der
Typus hatte sich aber, aus Bedürfniss, einen besonderen Assimilations-Apparat erworben in den chro-
matophorenhaltigen Haaren. Hieraus entwickelte sich Ch. Fzlum durch Ausbildung der Schläuche zu
Assimilationsorganen, jetzt wurden die Chromatophoren in den Haaren entbehrlich, es trat eine re-
gressive Metamorphose, ein Rückschlag ein zu den gewöhnlichen farblosen Phäosporenhaaren, deren
Function hauptsächlich wohl derjenigen der Wurzelhaare der Phanerogamen entspricht.

c) Die Ur-Chorda hatte weder assimilirende Haare noch Assimilationsschläuche, es entstanden aus ihr beide
Formen, und da sie den Lebensbedingungen besser angepasst waren, als der Urtypus, so ging dieser
zu Grunde.

Es ist Sache des subjectiven Gefühls, sich für eine dieser Eventualitäten zu entscheiden, und ich meiner-
seits gebe dem Falle c den Vorzug. Es ist meines Erachtens aber ziemlich überflüssig und von wissenschaftlich
geringem Werthe, über Verhältnisse zu grübeln, die man voraussichtlich niemals völlig wird aufhellen können.
Die Systematik hat in der Definition und Classifizirung der Typen eine so wichtige und dankbare Aufgabe zu er-
füllen, die gewiss keinen geringeren Aufwand an geistiger Arbeit erfordert, als irgend eine sonstige botanische
Untersuchung, dass sie sich gerne an dieser Aufgabe sollte genügen lassen.

13

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Maske 730:

Genus /sthmoplea KjeLın.

Die Pflanze besteht anfangs aus verzweigten Zellreihen mit durchaus intercalarem Längenwachsthum,
welches auf der Quertheilung der Gliederzellen beruht. Die normalen, in akroskoper Reihenfolge entstandenen
Seitenäste stehen grösstentheils opponirt, selten zu mehren im Wirtel, aber auch, namentlich an den Zweigen, einzeln.
Die älteren Axen werden durch Längstheilungen mehrreihig wie bei den Spkacelariaceen, die Oberflächenzellen
dieser älteren Axen können zu Adventivästen auswachsen. Die Basis der Pflanze bildet eine Art Haftscheibe von
geringer Ausdehnung, indem die nach Unten gekehrten Zellwände gallertartig aufquellen; an älteren Individuen
entspringen aus den Öberflächenzellen des Basalstückes kurze, gegliederte, abwärts gerichtete Auswüchse mit
gleichem Verhalten der Wände. Chromatophoren zahlreich, klein, scheibenförmig. Die uniloculären Sporangien
sind nahezu kugelrund. An jüngeren, einreihigen Aesten entstehen sie meist paarweise opponirt dadurch, dass
eine Segmentzelle des Fadens durch zwei Längswände in drei Zellen zerfällt, deren beide äussere sich zu Sporangien
entwickeln, deren mittlere, die Sporangien verbindende Zelle unverändert bleibt. Entsteht ein Sporangium einzeln
an einem Segment, so ist in diesem nur eine Längswand aufgetreten, oder, hatten sich zwei Längswände gebildet,
so ist die gegenüberliegende Zelle zu einem Aste ausgewachsen. An älteren, mehrreihigen Theilen der Pflanze
entstehen die Sporangien durch Auswachsen einer beliebigen Oberflächenzelle. !)

Isthmoplea sphaerophora Carn. sp.

Bildet kleine, 2 bis 4 Centimeter hohe Büschel. Dicke der einreihigen, fructificirenden Zweige 0,013 bis
0,020 Mill., der vielreihigen Basalstücke 0,040 bis 0,050 Mill. Durchmesser der Sporangien durchschnittlich 0,040 Mill.

Vorkommen. Vom nördlichen Eismeer längs der skandinavischen Küste bis zum Skagerack. Atlan-
tische Küsten Europas und Nordamerikas. Für Deutschlands Flora hier zum ersten Male aufgeführt. Auf Florideen,
besonders Polysiphonia urceolata, subliteral bei Helgoland, gesammelt von WOLLNY (als Zeiocarpus cruciatus) und
neuerdings von REINBOLD. Mai und Juni.

Erklärung der Abbildungen.

Fig. 1. Eine büschelförmig verzweigte Pflanze, an einem Stück des Thallus von Zolysiphonia urceolata
haftend. (4).

Fig. 2. Abschnitt einer fructificirenden Pflanze, um die normale Verzweigung, sowie den Wechsel in der
Stellung der Sporangien zu zeigen; a— a die Primäraxe. (2P).

Fig. 3. Basis einer älteren Pflanze, welche bei b mit einer kleinen Haftscheibe an dem Substrate Pt,
einem Zweige von Pirlota plumosa, befestigt ist; aus b ist zur Linken ein Adventivast hervorgewachsen. (120),

!) Pluriloculäre Sporangien sind neuerdings von BATTERS (Marine Algae of Berwick on Tweed S. 58) angegeben worden, „formed
in the continuity of the branches“. Es wäre sehr erwünscht, Genaueres über dieselben zu erfahren. Vor der Hand möchte ich noch glauben,
dass die von BATTERS gefundene Pflanze vielleicht identisch ist mit Pylaiella curta FosLıe (in Tromsö Museum Aarsh. X p. ı81 Taf. 3 Fig. 4, 5,
sowie Contribution to knowledge of the marine Algae of Norway p. ııı). Schon Fosrn: meint, dass seine ?, curia wohl ein eigenes, neues
Genus bilden dürfte, und ich trage keinerlei Bedenken, dieselbe von Zezocarpus (Pylaiella) generisch zu trennen wegen der Mehrreihigkeit der Axen;
ich schlage vor, die Pflanze Zosiea curta zu Ehren ihres Entdeckers, des um die Erforschung der norwegischen Algenflora verdienten Herrn Fosı.ıe
in Tromsö zu benennen. Zöosliea curta erinnert im Habitus allerdings an Zei. Zitoralis, allein in Wirklichkeit ist der fructificirende Theil der
Axen mehrreihig und nur die Rindenzellen dieses mehrreihigen Thallusabschnittes verwandeln sich auf weite Strecken in pluriloculäre Sporangien.
Uniloculäre Sporangien sind unbekannt. Es könnte demnach die Vermuthung entstehen, dass Zosliea curta die pluriloculäre Sporangien tragende
Form von Z/sikmoplea sei, zumal sie durch das intercalare Wachsthum und die Art der Verzweigung mit /stkmoplea übereinstimmt. Allein die
Axen des letzteren Genus sind an der Basis am dicksten, diejenigen von Zosliea dagegen verjüngen sich gegen die Basis und werden hier meist
einreihig, auch tragen die Zweige von Zosliea kurze Haarspitzen, welche bei Zstkmoplea fehlen,

46 :

Fig. 4. Basis einer jüngeren Pflanze, welche zeigt, dass die Haftscheibe im Wesentlichen durch die zu
geschichteter Gallerte aufquellenden Zellwände der untersten Zellen gebildet wird. (#29).

Fig. 5. Unterer Theil der Primäraxe in der Oberflächenansicht. Eine der äusseren Zellen (sp) ist zur
Anlage eines Sporangiums ausgewachsen. (#20).

Fig. 6. Querschnitt durch den in Fig. 5 gezeichneten Theil der Axe; die Längswände haben zunächst
Quadranten gebildet, welche sich dann, wie bei Spkacelaria, weiter getheilt haben. (#29).

Fig. 7. Stück aus einem jüngeren, noch im Längenwachsthum begriffenen Theile der Pflanze. Die Haupt-
axe ist erst aus einer Zellreihe gebildet, bein und n’ haben sich zwei ihrer Glieder durch intercalare Querwände
getheilt. In dem Seitenaste zeigen fast sämtliche Glieder diese intercalare Quertheilung, es kann daher weder von
einem Scheitelwachsthum noch von einem trichothallischen Wachsthum die Rede sein. Dem Aste gegenüber ent-
springt ein Sporangium, von welchem, da es bereits entleert, nur noch ein Theil der Hülle s erkennbar ist. (32°).

Fig. 8. Stück einer bereits in Längstheilung begriffenen Axe, aus welcher adventiv 4 Astanlagen ver-
schiedenen Alters (ab cd) seitlich hervorsprossen; bei d gelangt das Princip des rein intercalaren Wachsthums
bereits zu deutlichem Ausdruck. (22°).

Fig. 9. Stück einer alten Hauptaxe cc mit den beiden normalen Seitenästen a und b und zahlreichen,
aus Oberflächenzellen der Hauptaxe hervorsprossenden Adventivästen ; neben der Basis von b hat sich ein Sporan-
gium entwickelt. (129).

Fig. 10. Einreihiger Seitenzweig mit zwei opponirten Sporangien, dem häufigsten Falle der Sporangien-
stellung. Die Wand, durch welche ein junges Sporangium sich abgliedert, springt in den tragenden Zellfaden ein,
so dass die Gliederzelle, welche die beiden gegenüberstehenden Sporangien verbindet, schmaler ist, als die übrigen
Gliederzellen. Der Inhalt dieser verbindenden Gliederzellen entspricht aber im frischen Zustande ganz dem Inhalt
der übrigen Gliederzellen und zeigt eine Anzahl eiförmig-rundlicher, scheibenförmiger Chromatophoren. (52°).

Fig. ı1. Stück einer bereits mehrreihigen Hauptaxe mit einem einreihigen Seitenaste und einer Stellung
der Sporangien, welche weniger häufig ist. Ein Sporangium entspringt an der Hauptaxe, correspondirend dem
Äste, es ist mit diesem durch eine Oberflächenzelle verbunden. Der Ursprung des hinter der Basis des Astes
stehenden Sporangiums ist nicht klar erkennbar. Dagegen stehen an dem Aste selbst die beiden Sporangien ein-
zeln, ohne Gegenüber, die sie abgliedernde Wand springt fast bis in die Mitte des tragenden Fadens ein; die durch
diese Längswände gebildeten Schwesterzellen der Sporangien weichen hinsichtlich ihres Inhalts von den übrigen
Gliederzellen nicht ab. (229).

Fig. 12. Stück eines einreihigen Fadens mit zwei gegenüberstehenden Sporangien, wovon das linke noch
nicht ganz ausgewachsen ist, das rechte gerade seine Schwärmsporen durch einen in der Membran entstandenen
Porus entlässt. Die verbindende Gliederzelle ist durch eine Längswand in zwei Zellen gespalten, ausserdem hat
die linke Sporangial-Mutterzelle noch vor dem Auswachsen in ein Sporangium eine untere, vegetative Zelle ab-
gegliedert, die möglicher Weise auch noch die Anlage eines Sporangiums darstellt. Die Abgliederungs-Wand des
rechts. stehenden Sporangiums ist fast gar nicht in die Fadenzelle eingerückt. (629).

Bemerkungen. Die von KJELLMAN auf den Zefocarpus sphaerophorus CARM. begründete Gattung Zsökmoplea
scheint mir mit voller Berechtigung von Zefocarpus abgezweigt zu sein. Sie unterscheidet sich vom letzteren Genus
hauptsächlich durch die Spkacelaria-artig vielzelligen Basalstücke, von den Spkacelariaceen durch das Fehlen des
Scheitelwachsthums und dadurch, dass die Haftscheibe bei /s2hmoplea nicht primär, sondern secundär gebildet wird.
Die von KJELLMAN!) angegebenen horizontalen Fäden, aus denen die Axen entspringen sollen, habe ich nicht
finden können, und scheint mir das Vorhandensein derselben durch solche Bilder, wie Fig. 4, nahezu ausgeschlossen.
Die Frage ist schwer zu entscheiden, weil auf der Oberfläche der Florideen, an denen /stkmoplea wächst, gewöhn-
lich auch Anfänge kriechender Zezocarpus-Arten vorhanden sind; doch muss ich zugeben, keine ganz jungen,
zweifellosen Individuen von /szkmoplea gesehen zu haben.

Bislang rechnet man nur eine Species zum Genus ZsZhmoplea;, doch dürfte wohl auch der Zefocarpus ge-
minatus HOOK. et HARV. der antarktischen Gewässer, von welchem schotenförmige pluriloculäre Sporangien bekannt
sind, hierher zu ziehen sein. Vgl. dazu ASKENASY, Algen der Gazellenexpedition S. 16 Taf. V, sowie HARIOT,
Algen vom Cap Horn Taf. III Fig. ı und 2.

‘) Handbok i Skandinaviens Hafsalgfora I S. Sı.

Irene > m Na >

Genus Stietyosiphon Kürz.

Thallus verzweigt mit mehr weniger fadenförmigen Aesten, radiär gebaut, hohl oder solid, an der Basis
mit einem Büschel kurzer Wurzelhyphen haftend. Das Gewebe besteht aus parenchymatischen Zellen, deren cen-
tral gelegene am längsten und breitesten, deren oberflächlich gelegene oder Rindenzellen am kürzesten und
schmalsten sind; in der Regel sind von Aussen bis zur Axe oder bis zum axilen Hohlraum drei Schichten von
Zellen vorhanden. Die Zellenvermehrung erfolgt an jungen, noch aus einer Zellreihe bestehenden Pflanzen und
Adventivzweigen durch intercalare Theilung längs der ganzen Axe, später, wenn die unteren Theile der Pflanzen
und Aeste mehrreihig geworden, localisirt sich dieses Wachsthum auf die länger einreihig bleibenden obersten Ab-
schnitte des Thallus, obwohl die Zellen der Rindenschicht noch verschieden gerichtete Theilungen in ziemlich alten
Theilen der Pflanze eingehen. Da das Längenwachsthum in diesem Sinne scheitelwärts erlischt, so nähert sich das-
selbe zuletzt der Bildung eines an der Spitze gelegenen, durch intercalare Theilung einer kurzen Zellreihe fructio-
nirenden Vegetationspunktes; auf der Spitze des Thallus findet man ein bis drei farblose Haare, von denen eins
die Axe fortsetzt, durch geringeren Ouerdurchmesser aber scharf gegen dieselbe abgesetzt ist. Ausserdem ent-
springen Haare aus einzelnen Rindenzellen. Die unregelmässig zerstreuten, oft in Menge dicht bei einander
liegenden, warzenförmigen, pluriloculären Sporangien entstehen durch Umbildung des Inhalts von Rindenzellen.
Uniloculäre Sporangien unbekannt.

Stiectyosiphon tortilis Rurr. sp.

Thallus fadenförmig, wiederholt seitlich verzweigt, 0,1 bis 0,3 Meter lang, meist büschelig beisammen-
stehend. Axen nur in den unteren Theilen mit schmalem, axilem Hohlraum, der stets von vier langgestreckten
Parenchymzellen umgeben ist. Chromatophoren bandförmig verzweigt.

Vorkommen. Subliteral an Muscheln, Steinen und auf Lehmboden; nördliche atlantische Küsten Europas.
Nördliches Eismeer, nördlicher stiller Ocean. Vom ersten Frühling bis zum Herbst.

Erklärung der Abbildungen.
Taf. 31. Sietyosiphon tortilis RUPR. sp.

Fig. ı. Büschel der Pflanze, an einem Stein befestigt. (7).

Fig. 2. Spitze des Thallus eines normalen, im Längenwachsthum begriffenen Zweiges, mit Haaren be-
setzt. (320).

Fig. 3. Junger Adventivast mit intercalarem Wachsthum. (32°).

Fig. 4 bis 7. Ganz junge Anlagen solcher Adventiväste. (*279).

Fig. 8 bis ıı Spitzen wenig älterer Adventiväste. (#2).

Fig. 12. Stück aus einem etwas älteren, bereits mehrreihigen Thallus. (32°).

Fig. 13. Querschnitt eines bereits ausgewachsenen, aber noch sterilen Thallus; die Rindenschicht von
Chromatophoren erfüllt. (22°).

Fig. 14. Längsschnitt aus einem ähnlichen Stadium, wie Fig. 13. (22°).

Fig. ı5. Basis eines jungen Thallus mit kurzen Wurzelfäden. (19°).

Fig. 16 Flächenansicht eines Zweiges mit mehr vereinzelt stehenden Sporangien. (229).

Fig. 17. Flächenansicht eines dickeren Zweiges mit sehr dicht stehenden Sporangien. (22°).

Fig. 18. Querschnitt durch den oberen Theil einer fructificirenden Pflanze vom Typus der Fig. 16; r
vegetative Rindenzellen, s Sporangien. (32°).

Fig. 19. Querschnitt durch den unteren Theil einer fructificirenden Pflanze vom Typus der Fig. 16, mit
engem axilen Hohlraum, 1 entleerte Sporangien. (32°).

14

48

Taf. 32. Stietyosiphon tortilis RUPR. sp.

Fig. ı Längsschnitt, Fig. 2 Querschnitt eines fructificirenden Astes vom Typus der Fig. ı7 Taf. 31. (32°).
Fig. 3. Zwei vegetative Oberflächenzellen mit ihren Inhaltskörpern, durch Theilung aus einer Mutterzelle
hervorgegangen. (1299).

Fig. 4 bis 9. Entwickelung der Schwärmsporen im Sporangium, nach lebendem Materiale gezeichnet. (129).
Fig. 10. Ein Sporangium mit reifen Schwärmsporen nach Einwirkung von Glycerin. (1299).

Fig. 11. Zellwandgerüst im Innern eines Sporangiums nach Zerstörung des Inhalts durch eau de Javelle. (1399).
Fig. 12. Geöffnetes Sporangium, dessen Sporen unter Auflösung der Zwischenwände austreten. (1290).
Fig. 13. Schwärmspore; der Pigmentfleck am Chromatophor ist mehr rothbraun gefärbt, als in der

Figur. (1299).

Bemerkungen.

Die Gattung Szictyosiphon wurde auf eine im mittelländischen Meere wachsenden Pflanze von KÜTZING !)
gegründet, welche er 57. adriaticus nannte. In der Folge hat ARESCHOUG?) eine bislang als Form zu Dietyosiphon
foeniculaceus gerechnete Pflanze zum Typus einer besonderen Gattung erhoben und P’loeospora subarticulata
genannt, später zu dieser neuen Gattung auch den Scylossphon tortilis RUPR. als Phloeospora tortilis gezogen.

Darauf hat dann HAUcK°) mit vollem Recht die Gattung PAloeospora ARESCH. mit Säetyosiphon KÜTZ.
vereinigt, da ein generischer Unterschied zwischen beiden nicht zu finden ist; der Name /’%loeospora musste unter
diesen Umständen dem Namen Sie£yosiphon, als dem viel älteren, Platz machen. Mir vorliegende Präparate von
Stietyosiphon adriaticus, welche ich Herrn Prof. BERTHOLD verdanke, stimmen im Wachsthum des Thallus wie in
der Sporangienbildung mit S7. Zortilis so vollständig überein, dass in der That nur Species- Unterschiede übrig
bleiben. Danach besitzt S7. adriaticus einen durchweg röhrenförmig-aufgeblasenen Thallus, während der Thallus
von S7. tortilis grösstentheils solid ist und nur an den dicksten Stellen den Anfang eines centralen Hohlraums
zeigt (vgl. Taf. 31, Fig. 13, 18, 19.) Ferner soll nach den vorliegenden Angaben, die ich nicht zu controliren
vermochte, die innerste Gewebeschicht bei 57. adriaticus aus „rundlichen“ Zellen bestehen; auch stehen die Seiten-
äste von SZ. adriaticus häufig in Wirteln, daneben jedoch auch einzeln. Chromatophoren finden sich bei 57.
adriaticus ziemlich zahlreich in jeder Zelle, es sind kurze, etwas gewundene Bänder.

Was nun das Vorkommen zweier Arten von Szetyosiphon in den nordischen Meeren, eines 57. subarticulatus
und eines SZ. Zortilis anlangt, so habe auch ich dasselbe früher vertreten und nach dem Vorgange von ARESCHOUG
diese beiden Arten in meiner Flora der westlichen Ostsee unterschieden. Fortgesetzte Vergleichung dieser Formen,
besonders im lebenden Zustande, hat mich überzeugt, dass sie durch alle Uebergänge verbunden und nicht einmal
als Varietäten aus einander zu halten sind. Bei aufmerksamem Suchen findet man gelegentlich Exemplare, deren
einer Ast zu Phl. subarticulata, deren anderer zu PAl. tortilis nach den Diagnosen ARESCHOUG’s gezogen werden
müsste, und auch KJELLMANN?) hat die Schärfe der Differenzmerkmale von Phloeospora subarticulata und Phl.
Zortilis nicht zu steigern vermocht. Ich habe darum PAl. subarticulata ARESCH. ganz eingezogen, weil Zortzlis der
ältere Speciesname ist. Was die grosse, sterile Form des Stockholmer Skärgard anlangt, so möchte ich dieselbe
für einen Zustand halten, der dadurch zu Stande kommt, dass losgerissene Exemplare sich hier durch Adventiv-
sprosse lebhaft vermehrten und einen etwas veränderten Habitus annehmen, was nicht ohne Beispiel ist (Ozofkallia
scorpioides; schwimmende Form von Sargassum bacciferum ; manche Sphacelariaceen).

Bezüglich der vegetativen Entwicklung bedürfen die Abbildungen unserer Pflanze noch wenige Worte der
Erläuterung.

Das Längenwachsthum der jungen Zweige vollzieht sich durch intercalare Quertheilung der Zellen (vgl.
Taf. 31, Fig. 3), die Spitze ist dabei keineswegs in der Zelltheilung gefördert, so dass ein apicaler Vegetationspunkt
nicht angenommen werden kann. Im Gegentheil, die Quertheilung der Zellen ist in den unteren und mittleren
Theilen eines jungen Astes (vgl. Fig. 3, Taf. 31) entschieden lebhafter, als in der Spitze, wo die oberste Zelle
sogar häufig eine Längstheilung erfährt und damit die Quertheilungen ganz einstellt. Genau dasselbe Aus-
sehen wie Fig. 3 zeigen junge, noch einreihige Pflänzchen, die man an Steinen u. s. w. findet, nur dass bei diesen
die Spitze, unterhalb der Basalzelle des Haares, auf eine längere Strecke oft gar keine Quertheilung erkennen
lässt. An solchen Pflänzchen wird der mittlere Theil zuerst mehrreihig, und dann hat es den Anschein, als ob
in dem basalen, sich lebhaft theilenden noch einreihigen Abschnitte zeitweilig ein besonderer Vegetationspunkt läge.

!) Phycol, gener. p. 301 Taf. 21.

2) Observ. phycol. III p. 25 und Botan. Notiser 1876 p. 34.
*) Die Meeresalgen Deutschlands, S. 376.

4) Handbok i Skandinaviens Hafsalgflora p. 54 und 55.

Das der Spitze des Thallus aufsitzende, in die Verlängerung der Axe fallende Haar besitzt einen
selbständigen basalen Vegetationspunkt, wie die seitlich am Thallus entspringenden Haare, und ist sowohl durch
seine Breite wie durch die geringe Färbung des Inhalts scharf gegen die oberste Thalluszelle abgesetzt; letztere
ist übrigens, wie schon bemerkt, an jungen ÄAesten häufig durch eine Längswand in zwei Zellen gespalten. Erst
an älteren Axen, deren ganzer unterer Theil aus mehreren Längsreihen von Zellen besteht, kommt der einreihigen
Spitze des Thallus insofern eine besondere Bedeutung für das Längenwachsthum zu, als hier die intercalare
Zelltheilung am längsten anhält. Ich möchte daher den Sachverhalt so formuliren: Der Thallus von Sizetyosiphon
besitzt ein intercalares, zuletzt in akroskoper Richtung erlöschendes Längenwachsthum.

Das Wachsthum des Thallus in die Dicke erfolgt dadurch, dass in den Gliederzellen der einreihigen Aeste
eine Längswand, darauf eine zweite, zur ersten senkrechte Längswand in jeder Segmenthälfte auftritt, so dass das
einzelne Segment in vier Quadranten zerfällt. Wie Fig. 3 (Taf. 31) lehrt, kann die Längstheilung in sehr
verschiedenen Segmenten beginnen. Die vier Quadrantenzellen theilen sich darauf durch Tangential-Wände, die
inneren Theilzellen, die man Markzellen nennen könnte, theilen sich in der Folge nicht weiter, die äusseren
dagegen zerfallen durch quer gerichtete, radiale und tangentiale Wände und bilden somit die grosszelligere innere
und die kleinzelligere äussere Rindenschicht.

Die Verzweigung des Thallus ist eine normale oder adventive; die normalen Seitenäste entspringen seitlich
in akroskoper Folge an der Hauptaxe, die Adventiväste aus beliebigen jüngeren und älteren Rindenzellen, oft so
gedrängt, dass sie an alten Thallusstücken einen dichten Ueberzug bilden, so namentlich in alten Aquarium-
Culturen der Pflanze.

An jüngeren Theilen entspringen die normalen wie die adventiven Seitenäste in gleicher Weise, durch
Bildung eines Auswuchses aus dem oberen Theile einer Rindenzelle (Taf. 31, Fig. 4, 5,7.) An alten Abschnitten,
wo die Rinde kleinzelliger geworden ist, wächst die ganze Oberfläche einer Rindenzelle zu einem Adventivast aus.
— Die seitenständigen Haare entspringen ebenso wie die normalen Seitenäste, ihre erste Anlage ist nur Kleiner
und farblos. (Vgl. Taf. 31, Fig. 2 bis ır.)

Die auf Taf. 32 referirten Untersuchungen haben bezüglich der Sporangien von Szetyosiphon tortilis zu
einem Resultate geführt, welches von demjenigen der Autoren abweicht, welche bisher über diese Pflanze
geschrieben haben. ARESCHOUG, HAUCK, KJFLLMANN (sämtlich 1. c.) betrachten die Sporangien als uniloculär, für
welches Urtheil offenbar die entleerten Hüllen von Sporangien, aus welchen die Schwärmsporen ausgeschlüpft
waren, massgebend geworden sind. Denn diese entleerten Hüllen zeigen in der That nur einen einzigen Hohlraum.
Dann hat aber WOLLNY,!) allerdings von getrockneten Helgoländer Exemplaren und mit dem Ausdrucke
einiger Bedenken, für diese Pflanze pluriloculäre Sporangien beschrieben, welche sich von den auch von ihm
angenommenen einfächerigen Sporangien durch ein intrasporangiales Zellwandnetz unterscheiden sollen.

Ich selbst habe Hunderte von lebenden, fructificirenden Exemplaren der verschiedensten Formen, Standorte
und Jahreszeiten durchmustert, und bin dabei zu dem Ergebniss gekommen, dass man bis jetzt nur pluri-
loculäre Sporangien von SizicZyosiphon tortilis kennt, welche in der Weise gefächert sind, wie es
WOLLNY |. c. angegeben hat.

Allerdings sind die entleerten Sporangien vollkommen einfächerig; dies rührt aber nur daher, weil beim
Austritt der Schwärmsporen sich die inneren Zellwände vollständig auflösen, ein Vorgang, der partiell auch
bei den pluriloculären Sporangien vieler anderer Phäosporeen vorkommt und in dieser Form längst bekannt ist.
Aber schon wenn man frische Exemplare mit reifen Zoosporangien in verdünntes Glycerin legt, so dass sich der
Plasmaleib der Zoosporen zusammenzieht, wird es klar, dass zwischen den einzelnen sich contrahirenden Schwärm-
sporen Zellwände vorhanden sind von allerdings schwachem Lichtbrechungsvermögen. Man sieht, dass die
Innenseite der Sporangienhülle von einer Schicht mit schwächerem Lichtbrechungsvermögen gebildet wird,
von welcher aus deutlich Scheidewände zwischen die Zoosporen eindringen. (Taf. 32, Fig. 10.) Behandelt man
reife Sporangien aber mit eau de Javelle, welches den gesammten Inhalt derselben verflüssigt, so bleibt das die
Zoosporen von einander trennende Zellwandnetz allein übrig. (Fig. ı1.) Ein gutes Objectivsystem zeigt übrigens
auch an lebenden Sporangien deutlich das Netzwerk der inneren Zellwände. (Fig. 9.)

Die Sporangien von Szietyosiphon?) entwickeln sich durch Umbildung des Inhalts vegetativer Rindenzellen.
Diese Zellen, während der rein vegetativen Entwickelungsperiode der Pflanze deren Assimilationsorgan, enthalten
ausser einem hellgrauen, körnigen Protoplasma und einem centralen Zellenkern einige wenige, bandförmige und
gewundene, oft verzweigte Chromatophoren (Taf. 32 Fig. 3.) In ganz jungen Zellen findet man oft nur einen
einzigen solchen Chromatophor. Die Umwandlung einer derartigen Zelle in ein Sporangium beginnt damit, dass

1) Hedwigia 1886. IV. S. ı30. Taf. II. Fig. 1.
2) Auch von S%. adriaticus kenne ich nur pluriloculäre Sporangien; sie zeigen ganz den Typus des 54 Zortilis.

die Zelle sich abrundet und ein wenig als halbkuglige Papille über die Thallusfläche emporwölbt. Darauf tritt
Verdoppelung des Zellkerns und Theilung der Chromatophoren ein (Fig. 4, deren beide Zellen Sporangium-
Anlagen sind). Auch können die Chromatophoren sich bereits vor Theilung des Kerns fragmentiren (Fig. 6 ab).
Dann sieht man 4 Zellkerne (Fig. 5), und darauf beginnt die Zerklüftung des Plasmaleibes durch Zellwände (Fig. 7),
indem die so entstandenen Zellen sich weiter nach dem gewöhnlichen Schema der Zweitheilung in immer mehr
Kammern zerlegen (Fig. 6 c, Fig. 8, Fig. 9). In den Theilzellen der mittleren Entwickelungsstadien kommen auf
jede Zelle noch mehrere Chromatophoren (Fig. 6c, Fig. 8), in den fertigen Sporangien enthält jede Spore nur
einen kahnförmig-plattenförmigen Chromatophor (Fig. 9). Ist das Sporangium reif, so bildet sich am Scheitel durch
locale Verflüssigung der Wand ein rundes Loch, durch welches sämmtliche Schwärmsporen unter Verflüssigung
der sie trennenden inneren Wände austreten (Fig. 12). Die Schwärmsporen besitzen eine breit birnförmige Gestalt,
einen etwas concaven, plattenförmigen Chromatophor und einen rothbraunen Pigmentfleck, neben welchem das
Cilienpaar befestigt ist. Kopulation der Schwärmer wurde nicht beobachtet, allerdings gelang es auch nicht, die
Keimung zu verfolgen.

An dieser Stelle möge auch des Zeiocarpus bracchiatus HARY. (Ect. Griffithianus LE JOL.) gedacht sein,
welchen BORNET!) mit Recht vom Genus Zeiocarpus getrennt und zu Phloeospora ARESCH. als Phl. bracchiata
gezogen hat. Diese Pflanze verdient zweifellos ihren Platz neben der Gattung Szetyosiphon, obwohl ich sie mit
demselben doch nicht generisch vereinigen möchte. Wenn wir auch von dem Umstande absehen wollten, dass
Phloeospora.bracchiata, wie ich mich durch eigene Untersuchung überzeugte, wirklich ächte uniloculäre Sporangien,
und nur diese, besitzt, so weicht sie doch nicht ganz unerheblich von Szezyosiphon adriaticus und tortilis dadurch
ab, dass ihr Thallus nur local mehrreihig wird und durch tangentiale Zellwände nur local eine Rindenschicht
abgliedert, während andere Theile einreihig bleiben?), ferner dadurch, dass die Zweigspitzen constant in ein farb-
loses Haar auslaufen, welches dieselbe Breite wie die assimilirenden Thalluszellen der Zweigspitze besitzt, während
die den Zweigspitzen von Sietyosiphon aufsitzenden Haare erheblich dünner sind als jene. Das Wachsthum der
jüngeren Zweige ist bei P%loeospora bracchiata in der gleichen Weise intercalar, wie bei Sietyosiphon tortilis, in
den vegetativen Zellen sind zahlreiche kleine, kurz-bandförmige Chromatophoren enthalten. Solange man nicht bei
Phl. bracchiata die gleichen pluriloculären Sporangien gefunden hat, welche für SieZyosiphon so characteristisch
sind, möchte ich daran festhalten, P%l. bracchiata als Typus einer eigenen Gattung zu betrachten, welcher der
Name P%hloeospora verbleiben mag.

Nach meinem Dafürhalten gehört Szetyosiphon wegen der Art der Fructification in unmittelbare Nähe von
Punctaria und Lithosiphon, und habe ich die Gattung auch zu den Punctarieae in meiner Flora der westlichen
Ostsee ?) gestellt, allerdings auch in unmittelbare Nähe der von mir dort ebenfalls den Punctarieae zugetheilten
Gattung Siriaria. Hierfür war mir das gleiche Verhalten des intercalaren, zuletzt akroskop erlöschenden Wachs-
thums massgebend. Dies letztere Merkmal besonders betonend, hat dann KJELLMAN ?) eine besondere Gruppe
der Siriarieae gebildet, welche nur Striaria und Phloeospora ARESCH. umfasst.

Eine erneute Untersuchung von Siriaria, allerdings nur der bei Kiel wachsenden Ostseeform, hat mir die
Thunlichkeit dieser Zusammenstellung wieder zweifelhaft erscheinen lassen, weil ich darauf kein entscheidendes
Gewicht legen möchte, ob ein intercalares Thalluswachsthum in basiskoper oder akroskoper Richtung erlöscht.
Die fructificirenden Exemplare von Szrzaria scheinen mir nämlich doch auf eine engere Verbindung mit
Asperococcus hinzuweisen, ein Zusammenhang, den schon KÜTZING °®) angenommen hat.

Ich kenne von Striaria attenuata nur Formen mit uniloculären Sporangien. Allerdings ist in der Literatur
auch von pluriloculären Sporangien die Rede‘) allein Abbildungen derselben sind mir nicht bekannt geworden.
Das Längenwachsthum erfolgt bei ganz jungen Aesten durch intercalare Quertheilung sämmtlicher Zellen, bei
älteren Aesten ist es auf die Spitzen eingeschränkt, wie ich das bereits früher dargestellt habe‘), Auch nachdem
schon Längstheilungen in den Gliederzellen eingetreten sind, dauert das intercalare Längenwachsthum noch fort.
Auf nachstehendem Holzschnitte zeigt Fig. A die Spitze eines Astes, welcher sein Längenwachsthum demnächst
vollendet haben wird. Fig. B ist ein Abschnitt des älteren, fructificirenden Theils derselben Pflanze mit den zonen-
förmig angeordneten Sporangien, zwischen welchen einzeln oder büschelweise farblose Haare entspringen, in der

!) Etudes phycologiques p. 16. Anm.
2) Die Basalstücke sind mehrreihig, ziemlich hoch hinauf mit Hyphen bekleidet,

°) 5. 54.
*) Hafsalgflora S. 53. Wenn Kjerıman hier den Striarivae einen subterminalen Vegetationspunkt zuschreibt, so halte ich diese
Ausdrucksweise nicht für ganz zweckmässig,

®) Species Algarum p. 553.
®) Vgl. KjeLL.man, Handbok S. 53.
?) PRINGSHEIM’s Jahrb, Bd. XI, Taf. ı2 Fig. ı5. Der dort erwähnte Asperococcus ramosissimus ist bekanntlich eine Form von Siriaria attenuata,

5l

Flächenansicht. Fig. C ist ein Querschnitt durch eine solche Sporangien tragende Zone. Ausser den vielzelligen
Haaren und den durch körnigen Ton hervorgehobenen Sporangien (wovon bei s zwei entleert) finden sich noch

Erklärung des Holzschnitts.
A Spitze eines noch im Wachsthum begriffenen Astes von Siriaria attenuata. (?%.°). B Skizze eines älteren, fructificirenden Thallus-
Abschnittes mit den zonenförmig angeordneten uniloculären Sporangien und dazwischen stehenden Haaren. (3). C Querschnitt durch eine
Sporangien tragende Zone des Thallus, die jüngeren und älteren Sporangien sind durch körnigen Ton hervorgehoben, ferner bedeutet s zwei

entleerte Sporangien, a Stacheln. (?%P).

einzellige, sehr dickwandige Trichome a. welche mir den Stacheln ') von Asperococcxs morphologisch gleichwerthig
zu sein scheinen und sich von diesen nur durch ihre Einzelligkeit unterscheiden. Mehr noch als durch diese
Stacheln dürfte aber Strzarza durch die Form seiner uniloculären Sporangien sich Asperococcus nähern. Dieselben
werden angelegt durch eine tangentiale Theilung der Rindenzellen und ähneln daher die ganz jungen Sporangien
von Siriaria allerdings den Sporangien von Szetyosiphon, allen die älteren Sporangien (Fig. C) erheben sich so
weit über die Fläche der Rindenzellen und runden sich ab wie bei Asperococcus?), dass sie im ausgewachsenem
Zustande der Rinde thatsächlich aufsitzen. Immerhin zeigt hierbei ein Vergleich der Fig. C mit den Figuren 18
und 19 unserer Taf. 31, dass die Verschiedenheit des Sporangiums von Sirzaria und damit auch von Asperococcus
von demjenigen von Szzetyosiphon keine sehr tiefgehende, sondern nur eine graduelle ist. Darum bin ich auch
der Meinung, dass die Gruppen der Asperococceae und Punctarieae in den Gattungen Sirzarıa und Stzetyosiphon
eine Annäherung zeigen, wobei noch zu bemerken ist, dass S/rzaria in den Zellen zahlreiche kleine scheiben-
förmige Chromatophoren, wie Asperococcus, besitzt®), welche sich nur in älteren Zellen ein wenig bandförmig
verlängern.

Zu der Gruppe der Asperococceae rechne ich nunmehr von den mir genauer bekannten Phäosporeen die
Gattungen Strzaria, Asperococcus, Myriotrichia. Ich glaube, dass die der Laubfläche aufsitzenden Sporangien und
die von mir als Stacheln ?) bezeichneten Auszweigungen, welche diesen drei Gattungen gemeinsam sind, daneben
das intercalare Wachsthum, die Zusammengehörigkeit dieser Typen darthun. Vielleicht könnte man den bilateral
gebauten Asperococcus compressus von den radiär gebauten Asp. dullosus und echinatus generisch trennen, unter
Aufrechterhaltung des KÜTZInG’'schen Namens Zaloglossum. KJELLMAN®) nähert den Asperococceae auch, allerdings
als selbständigen Typus der Cozlodesmeae, das interessante Genus Cozlodesme STRÖMF. Nach genauerer Untersuchung
von Exemplaren verschiedenen Alters der Cozlodesme bulligera, welche ich Herrn FOSLIE in Tromsö verdanke,
komme ich aber zu einem abweichenden Ergebnisse und glaube, dass man Cozlodesme zu den Dietyosiphoneae

!) Ueber diesen Ausdruck vgl. meine Algenflora der westlichen Ostsee S. 53.

») Vgl. z. B. Atlas deutscher Meeresalgen Taf. 4 Fig. 7.

») Bei Myriotrichia erinnern die Stacheln an die ähnlichen Gebilde bei Sywmpkoricoceus, wie diese können sie ausnahmsweise auch in
einen Langtrieb auswachsen; andrerseits stimmt bei Myriofrichia die Bildung der Sporangien überein mit derjenigen von Zsöimoplea. Die Stacheln
sind am meisten entwickelt bei 7, c/avaeformis, weniger bei 7, fliformis, sie sind bedeutend redueirt bei Asperococeus, auf eine einzige Zelle ein-
geschränkt bei Siriaria, ich sehe darin eine continuirliche, regressive Entwicklungsreihe.

15

stellen sollte. Jüngere fructificirende Exemplare zeigen die Stellung der jungen Sporangien und den Bau der Rinde
ganz wie bei Dzctyosiphon, ältere, mit reifen Sporangien versehene, wie bei Godza. Der Thallus von Cozlodesme ist
im unteren Theile radiär, im oberen bilateral, und verzweigt sich nicht selten aus dem unteren Theile. Die
Zellenvermehrung ist ganz intercalar. Allein auch Godra zeigt nur an ganz jungen Individuen ein Wachsthum mit
Scheitelzelle, später wächst es ganz intercalar ohne Scheitelzelle, wie auch Dietvosiphon Chordaria in seinen älteren
Zuständen. Vielleicht wird man finden, dass Keimpflanzen von Cozlodesme eine Scheitelzelle besitzen, aber auch
wenn das nicht der Fall sein sollte, würde ich wegen der eigenthümlichen Entwicklung der sporangientragenden
Gewebeschichten kein Bedenken tragen, Cozlodesme zu der Dictyosiphoneae zu stellen.

ot

martelt 33 Sind 35:

Genus Spermatochnus KÜUTZ. em.

Pflanze von radiärem Querschnitt mit ausgeprägtem Spitzenwachsthum. Durch Ouertheilung einer Scheitel-
zelle entsteht ein Zellfaden, die Centralaxe, deren ältere Zellen sich durch Streckung bedeutend verlängern.
Aus den Segmenten der Scheitelzelle wachsen in succedanen, vier- bis fünfgliedrigen Wirteln mehrzellige primäre
Assimilationsfäden hervor mit mehreren kleinen scheibenförmigen Chromatophoren in der Zelle. Aus den unteren
Zellgliedern der primären Assimilationsfäden entwickelt sich, abwärts wachsend, ein pseudoparenchymatischer,
mehrschichtiger Rindenmantel, zwischen dem und der Centralaxe bald ein schleimerfüllter Intercellularraum entsteht,
indem nur die beiden sich stark verlängernden untersten Zellen der primären Assimilationsfäden später noch die
Verbindung zwischen Centralaxe und Rinde aufrecht erhalten. Nachdem die oberen Zellen der primären Assimilations-
fäden abgefallen sind, entwickelt sich durch Theilung der zweiten (vielleicht auch, doch selten) der dritten Zelle
von unten, die in der Rinde erhalten blieb, ein kleinzelliges Gewebe, dessen Zellen zu secundären Assimilationsfäden
auswachsen, welche in ihrer Gesammtheit den primären Sorus ausmachen; einzelne benachbarte Rindenzellen können
später den Sorus vergrössern, indem auch aus ihnen Assimilationsfäden hervorwachsen. Aus der Basis dieser
secundären Assimilationsfäden sprossen die uniloculären Sporangien hervor. Zwischen diesen primären Sori
entspringen aus einzelnen Oberflächenzellen der Rinde oder einer kleinen Gruppe zusammenliegender Rindenzellen
secundäre Sori, indem diese Zellen zu tertiären Assimilationsfäden auswachsen, welche ebenfalls aus ihrer Basis
uniloculäre Sporangien entwickeln. Pluriloculäre Sporangien unbekannt.

Spermatochnus paradoxus Rorn sp.

Haftet mit einer durch Hyphen, die aus der äussersten Rindenschicht hervorwachsen, gebildeten Basal-
scheibe an Fucus, Zostera u.s.w. Thallus reichverzweigt mit zugespitzten Aesten, I bis 4 Decimeter lang, in den
älteren Theilen ı bis 2 Millimeter dick. Sori in den jüngeren Theilen wirtelständig, an den älteren zerstreut.

Vorkommen. Atlantische Küsten Europa’s.

Erklärung der Abbildungen.

Tafel 33. Spermatochnus paradoxus.

Fig. ı. Oberes Stück einer jungen, noch sterilen Pflanze. (4).

Fig. 2. Zweig einer alten, fructificirenden Pflanze. (4).

Fig. 3. Junge, wachsende Zweigspitzen mit Haaren und wirtelständigen, primären Assimilationsfäden. ('49).

Fig. 4. Abnorme, alte Zweigspitze, bei der sämmtliche Rindenzellen zu Assimilationsfäden ausgesprosst
sind. (129).

Fig. 5. Zweigstück mit wirtelständigen, primären Sori. (?P).

Fig. 6. Zweigstück mit secundären Sori verschiedener Grösse. (2).

Fig. 7. Längsschnitt einer jungen, wachsenden Zweigspitze. s Scheitel, a primäre Assimilationsfäden,
nebst den Rindenzellen und den Haaren durch einen Ton hervorgehoben, h Haare, c Centralaxe, i Intercellular-
räume zwischen Centralaxe und Rinde. (#2).

Fig. 8. Basalstück der Pflanze, auf einem Thallus von /zczs aufsitzend, von Hyphen bedeckt, welche
aus der äussersten Rindenschicht hervorwachsen. (%).

Fig. 9. Einige Rindenzellen der Fig. 8, um den Ursprung der Hyphen zu zeigen. (?2°).

Fig. 10. Vegetationspunkt mit den Anlagen der jüngsten, primären Assimilationsfäden. (29).

54

Taf. 34. Spermatochnus paradoxus.

Fig. ı. Junger Wirtel von Assimilationsfäden a und frühes Entwicklungsstadium der Rinde r. c Centralaxe.
h Haare. (620)
Fig. 2. Erste Anlage der Rinde r, im Längsschnitt. aa junge Assimilationsfäden mit intercalarer Zell-

theilung. h Haare. c noch wenig gestreckte Zellen der Centralaxe. (#29).

Fig. 3. Weitere Entwickelung der Rinde im Längsschnitt. r’ erste, r” Anlage der zweiten Rinden-
schicht. (62°).

Fig. 4. Noch älteres Stadium der Rindenbildung; i beginnender Intercellularraum zwischen Rinde und
Centralaxe. Die zweite Rindenschicht entsteht hier, wie in Fig. I, theilweise durch tangentiale Theilung der Zellen
der ersten Schicht. (62°).

Fig. 5. Querschnitt durch ein berindetes Internodium. r Rinde. i Intercellularraum, von Flüssigkeit erfüllt,
c Centralaxe. (329).

Fig. 6. Querschnitt durch einen Knoten mit den Basalstücken von 5 im Wirtel stehenden primären
Assimilationsfäden, welche durch einen dunkleren Ton hervorgehoben worden sind. Dazwischen die Intercellular-
räume i. An den Endigungen der primären Assimilationsfäden sprossen Haare h und secundäre Assimilationsfäden
als Anfänge von 5 primären Sori hervor. (22°).

Fig. 7. Radialer Längsschnitt eines etwas älteren Stadiums. c Centralaxe, in dunklerem Ton gehalten
wie die daran anschliessenden Basalstücke zweier primärer Assimilationsfäden. r Rinde. i Intercellularraum.
pr junger primärer Sorus. s, s Anfänge secundärer Sori. sh secundäre Haare. (?2°).

Fig. 8. Längsschnitt durch einen jungen primären Sorus. c Centralaxe. i Intercellularraum. r Rinde !).
a Basalzelle eines primären Assimilationsfadens. s Sorus, dessen secundäre Assimilationsfäden aus einem Mutter-
gewebe hervorwachsen, welches durch Theilung der zweiten Zelle des primären Assimilationsfadens entstanden
ist. (429). '

Fig. 9. Beginn der Entwickelung eines secundären Sorus s; r Rinde. (#29).

Taf. 35. Spermatochnus paradoxus.

Fig. ı. Längsschnitt aus dem Thallus mit einem älteren, uniloculäre Sporangien tragenden, primären Sorus
c Centralaxe. i Intercellularraum. ab Zellen des den Sorus tragenden primären Assimilationsfadens, durch Theilung
von b sind die Mutterzellen der secundären Assimilationsfäden des Sorus abgegliedert worden. r Rinde. (*2°).

Fig. 2. Längsschnitt eines secundären Sorus mit Sporangien. c Centralaxe. i Intercellularraum.
r Rinde. (329. L

Fig. 3. Primärer Assimilationsfaden und Basis des zugehörigen Haares, um die Chromatophoren zu
zeigen. (62°).

Fig. 4. Rindenzellen in der Flächenansicht. (62°).

Fig. 5. Erste Anlage eines secundären Sorus in der Flächenansicht. (629).

Fig. 6. Junges uniloculäres Sporangium. (1209).

Fig. 7. Etwas älteres Sporangium s, rechts darunter eine ganz junge Anlage. h Haar, a secundärer
Assimilationsfaden. (1200).

Fig. 8. Reifes Sporangium. h Haar. a secundärer Assimilationsfaden. (129).

Bemerkung. Eine eingehende Darstellung der Entwickelungsgeschichte dieser Pflanze findet sich in der
Algenflora der westlichen Ostsee S. 67. Neu ist nur die Taf. 33 Fig. 4 dargestellte, abnorme Umbildung alter
Zweigspitzen, welche dadurch denen von Szdlophora sehr ähnlich werden.

1) Die äusserste Rindenschicht hat versehentlich einen dunkleren Ton erhalten.

Druck von Schmidt & Klaunig in Kiel,

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Spermatochnus paradoxus Roth sp.

38

55

Tafel 836.und 84.

Genus Strilophora J. Ac. em.

Thallus von radiärem Querschnitt, mit Spitzenwachsthum, doch ohne scharfe anatomische Gliederung in
Richtung der Längsaxe. Die Centralaxe des Thallus wird gebildet durch mehrere, gewöhnlich vier oder fünf
Zellreihen, deren jede im Vegetationspunkt in eine Scheitelzelle ausläuft, welche sich durch Querwände theilt.
Der Vegetationspunkt wird durch die pinselförmig zusammenschliessenden primären Assimilationsfäden übergipfelt,
welche den Gliederzellen der Centralaxe seitlich entspringen. Auch die Scheitelzellen können später in Assimilations-
fäden auswachsen. Aus den unteren Zellen der Assimilationsfäden entwickelt sich die Rinde. Aus der äussersten
Rindenschicht gehen die zu Sori gruppirten secundären Ässimilationsfäden nebst Haaren und Sporangien hervor.
Im unteren Theile wird der ältere Thallus hohl, aus den den Hohlraum begrenzenden Zellen entwickeln sich
einzelne abwärts laufende Hyphen. Uniloculäre Sporangien verkehrt-eiförmig, pluriloculäre Sporangien cylindrisch.

Stilophora rhizodes Enkn. sp.

Thallus auf Fucus-Arten sitzend, reich verzweigt, mit zugespitzten Aesten, ı bis 3 Decimeter lang, im
unteren Theile etwa ı Millimeter dick. Die zerstreut stehenden Sori durch mehr oder weniger ausgedehnte Flächen
freier Rinde von einander getrennt. Uni- und pluriloculäre Sporangien durchweg auf verschiedenen Individuen.

Vorkommen. Atlantische Küsten Europas und Nordamerikas.

Stilophora tuberculosa Fı. dan. sp.

Pflanze ı bis 3 Decimeter hoch, reich verzweigt, unten ı bis 2 Millimeter dick, an /zczs. Sori zusammen-
fliessend, aber höckerartig hervortretend. » Gewöhnlich uniloculäre und pluriloculäre Sporangien im gleichen Sorus.
Vorkommen. Oestliches Kattegat, westliche Ostsee.

Erklärung der Abbildungen.
Tafel 36. Szilophora rhizodes.

Fig. 1. Ast einer fructifieirenden Pflanze. (1).

Fig. 2. Rindenzellen mit Chromatophoren. (®29).
Fig. 3. Zweigspitze mit primären Assimilationsfäden und Haaren. (129).
Fig. 4. Primärer Assimilationsfaden mit Chromatophoren in den Zellen. (2°).

Fig. 5. Längsschnitt eines Zweiges, um die Entwicklung-der Rinde um die (farblos gehaltene) Centralaxe
herum zu zeigen.. (329),

Fig. 6, 7 und 8. Längsschnitte junger, wachsender Vegetationsspitzen. (*2°).

Fig. 9. Querschnitt eines jungen Astes mit vierreihiger Centralaxe. (32°).

Fig. 10. Querschnitt eines etwas älteren Astes; bei s und s’ erster Anfang der Sorus-Bildung. (32°).

Fig. ı1. Sori eines alten Thallus-Abschnittes in der Flächenansicht. (3).

Fig. 12. Querschnitt aus einem fertilen Thallus; a Assimilationsfäden, h Haare, s uniloculäres Sporangium,
y Querschnitt einer Hyphe am inneren Hohlraum des Thallus. (?7°).

Fig. 13. Fadenbüschel von einem Thallus mit pluriloculären Sporangien; a Assimilationsfäden, h Haar,
s Sporangien.

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56

Tafel 37. Silophora tuberculosa.

Fig. ı. Theil einer Pflanze in natürlicher Grösse, an Aucus vesiculosus angewachsen. (4).
Fig. 2. Thallusspitze. (1929). j

Fig. 3. Querschnitt eines jungen Thallus. (139).

Fig. 4. Längsschnitt eines jungen Thallus. (189).

Fig. 5. Aussenansicht eines Zweiges mit Sori. (PP).

Fig. 6. Querschnitt durch einen Sorus, der nur uniloculäre Sporangien zeigt; h Haare, y Hyphen. (229).
Fig. 7. Assimilationsfäden mit einem Haar, einem entleerten uniloculären Sporangium, einem vollen s

und einem entleerten s’ pluriloculären Sporangium. (62).

Tafel 38.

Genus Halorhıza Kürz.

Thallus cylindrisch, mit einer dichten Schicht gleich hoher secundärer Assimilationsfäden bedeckt, aus
deren unteren Theilen die Sporangien entspringen; Sori treten an der Oberfläche nicht hervor. Sonst wie Stlophora.

. Halorhiza vaga Kürz.
Pflanze ı bis 2 Decimeter hoch, bis 2 Millimeter dick, braun, von sammtartigem Aussehen. Assimilations-
fäden keulenförmig, an der Basis mehr weniger, verzweigt. Pluriloculäre und uniloculäre Sporangien auf ver-

schiedenen Pflanzen.
Vorkommen. Im Kattegat und in der westlichen Ostsee, an Fucus vesiculosus wachsend.

Erklärung der Abbildungen.

Fig. 1. Lebende Pflanze. (4).

Fig. 2. Spitze eines Astes, mit Haaren und primären Assimilationsfäden bedeckt. Die letzteren rücken
durch das Längenwachsthum des Thallus allmählig aus einander. (!9®).

Fig. 3. Etwas älteres Stück eines Zweiges mit spärlichen primären Assimilationsfäden und den Anfängen
der dicht stehenden secundären Fäden. (!929),

Fig. 4. Stück aus einem älteren Theile mit den gleichhohen secundären Assimilationsfäden. (3).

Fig. 5. Verzweigter Assimilationsfaden. In den mittleren Zellen sind die Chromatophoren z. Th. band-
förmig erweitert. Bei h ein junges Haar. (629).

Fig. 6. Centraler Theil des Ouerschnittes einer älteren Pflanze. Der innere, von Gallerte erfüllte Hohl-
raum ist mit einem Flechtwerk von Hyphen angefüllt, in deren Zellen kleine Chromatophoren auftreten. (*?9).

Fig. 7. Assimilationsfäden. Haar und ein gefülltes uniloculäres Sporangium (s); links daneben ein entleertes
Sporangium. (#29),

Fig. 8. Assimilationsfäden mit pluriloculären Sporangien (s); das ganz links stehende ist bereits entleert. (#29).

97

Tafel 39.

Genus Chordarıa Ac.

Thallus cylindrisch, verzweigt, mit einer gleichförmigen Schicht von Assimilationsfäden bedeckt, an deren
Basis die verkehrt-eiförmigen oder keulenförmigen uniloculären Sporangien entspringen. Pluriloculäre Sporangien
unbekannt. Vegetationspunkt terminal. Das Spitzenwachsthum älterer Pflanzen vollzieht sich durch intercalare
Quertheilung der vorletzten Gliederzellen eines schmalen Bündels.von Zellen, deren Endzelle kugelig aufgeschwollen
ist. Die aus der Spitze sich entwickelnden Längsreihen von Parenchymzellen nehmen gegen die Axe hin an Länge zu.

Chordaria flagelliformis Fı. dan. sp.

Pflanze ı bis 4 Decimeter lang, schwarzbraun, bis zu ı Millimeter dick, mit zahlreichen, meist einfachen
Seitenästen und von langen Haaren bekleidet. Thallus auch in den älteren Theilen gefüllt, zwischen den Reihen
von Parenchymzellen finden sich längs verlaufende Hyphen in grosser Anzahl, welche gegen die Axe hin immer
zahlreicher werden. Endzelle der Assimilationsfäden 1!/, bis 2 mal so breit als die Gliederzellen, mit gallertartig
verdickter Aussenwand.

Vorkommen. Nördliches Eismeer. Nördlicher atlantischer Ocean.

Chordaria divaricata Ac.

Pflanze ı bis 3 Decimeter lang, reich und wiederholt verzweigt. Thallus in den älteren Theilen hohl, nur
nahe der Basis wachsen aus den Parenchymzellen einige nach allen‘ Richtungen verlaufende Hyphen hervor.
Endglieder der Assimilationsfäden 2 bis 5 mal so breit als die darunter stehenden Gliederzellen.

Vorkommen. Nördlicher atlantischer Ocean.

Bemerkungen. Seitdem’ ich die Darstellung vom Scheitelwachsthum der Chordaria flagelliformis gegeben
habe!) gelang es mir, durch Auffindung ganz junger Pflänzchen von Chordaria divaricata, deren Spitzenwachsthum
an etwas älteren Individuen völlig mit dem von Ch. flagelkformis übereinstimmt, die Kenntniss des Chordaria-Typus
in einem nicht unwichtigen Punkte zu erweitern. Dass diese jungen Pflänzchen, welche an einer grösseren Alge
angeheftet sassen, wirklich zu Chordaria divaricata gehören, wird durch die stecknadelförmigen Assimilationsfäden
mit aufgeblasener. Endzelle, welche in dieser Form an keiner anderen Phäosporee der Kieler Föhrde sich finden,
bewiesen.

In Fig. 15 ist der optische Längsschnitt der Spitze eines solchen mit eau de Javelle durchsichtig gemachten
Pflänzchens gezeichnet; er entspricht im Wesentlichen schon dem Scheitel von Ch. fagelliformis in Fig. 7; nur
tritt eine axile Zellreihe schärfer hervor, wie auch in den Querschnitten Fig. 13 und 14.

Der Scheitel eines noch jüngeren Keimpflänzchens ist in Fig. 16 dargestellt. Hier ist die Endzelle des
Centralfadens noch nicht kopfartig aufgeschwollen, sondern selbst noch in Theilung begriffen. Der Centralfaden
tritt hier mit einer Schärfe hervor, wie im Scheitel von Spermatochnus; dagegen sind die Assimilationsfäden a und a
bereits typisch ausgebildet. Zwischen diesen typischen Assimilationsfäden finden sich aber andere, längere, die ganz
denen von Spermatochnus gleichen, offenbar aber nur den Keimpflanzen in einem primordialen Stadium eigen-
thümlich sind und später nicht mehr gebildet werden. Die Anlage der ersten pericentralen Zellreihen des Thallus
erfolgt auch hier wie bei Spermatochnus; später constituirt sich dann der Vegetationspunkt, wie er in Fig. ı5

gezeichnet wurde.

1!) Vgl. Algenflora der westlichen Ostsee S. 75.

58

Erklärung der Abbildungen. /
Fig. ı bis 7. Chordaria flagelliformis.

Fig. 1. Stück aus der Mitte einer lebenden Pflanze. (4).

Fig. 2. Querschnitt aus dem Thallus, um das Längenverhältniss der Haare und Assimilationsfäden, an
deren Basis die dunklen Sporangien sitzen, zum Durchmesser des Centralkörpers zu zeigen. Im letzteren heben
sich die weitlichtigen Parenchymzellen von den Hyphen ab. (%?).

Fig. 3. Stück des gleichen Querschnitts, stärker vergrössert; t Haare, a Assimilationsfäden, s Sporangien,
p Parenchymzellen, h Hyphen. (12°).

Fig. 4. a Assimilationsfäden, t Haar, s Sporangien, p Parenchymzellen. Die Chromatophoren sind durch
einen dunklen T'on hervorgehoben. (32°).

Fig. 5. Querschnitt nahe einer wachsenden Spitze. (129).

Fig. 6. Längsschnitt aus der gleichen Region. (12°).

Fig. 7. Axiler Längsschnitt durch einen Vegetationspunkt; s Scheitel, a Assimilationsfäden, h Haare. (#929).

Fig. S bis 16. Chordaria divaricata.

Fig. 8. Stück aus der Mitte einer lebenden Pflanze. (3).

Fig. 9. Querschnitt aus der Mitte eines fructifieirenden Thallus mit centralem Hohlraum. (2).

Fig. ı0. Stück desselben Querschnittes, stärker vergrössert; t Haare, a Assimilationsfäden, s Sporangien,
p Parenchymzellen des Innenkörpers. (12°).

Fig. 11. a Assimilationsfäden, s Sporangium, p peripherische Parenchymzelle. (?7°).

Fig. 12. Verzweigter Assimilationsfaden (?2°).

Fig. 13. Querschnitt eines jungen Pfäänzchens nahe der Spitze. ('2°).

Fig. 14. Querschnitt noch näher der Spitze; man sieht eine centrale Parenchymzelle scharf hervor-
treten. (120),

Fig. ı5. Optischer Längsschnitt der Spitze eines jungen Pflänzchens; s Scheitel, t Haare, a Assimilations-
fäden, c centrale Parenchymreihe. (?2°).

Fig. 16. Optischer Längsschnitt der Spitze eines ganz jungen Keimpflänzchens; s Scheitel, t Haar,
a Assimilationsfäden, c Centralreihe. (?29).

Tafel 40.

Genus Rhodochorton Näc.

Gattungscharakter vgl. S. 23.

Rhodochorton minutum Sun sp.

Syn. Callithamnion minutum SUHR in Flora 1831, p. 727 Fig. 3.
C. minutissimum SUHR in KÜTZING Spec. Alg. p. 640 und Tab. phyc. XI Taf. 571.

Dichte Räschen von 0,5 bis ı Millimeter Höhe an grösseren Algen. Aus kriechenden, verzweigten, dem
Substrat dicht angeschmiegten, theilweise pseudoparenchymatisch verbundenen Horizontalfäden erheben sich aufrechte,
reichlich und vorwiegend einseitswendig verästelte Thallusfäden, die in eine farblose einzellige Haarspitze auslaufen.
Dicke der Fäden 0,005 bis 0,01 Millimeter ; Gliederzellen 2 bis 6 mal so lang als breit. Chromatophoren einzeln
oder in geringer Zahl in den Zellen, plattenförmig, von unregelmässigem Umriss. Tetrasporangien einzeln oder zu
zweien auf ganz kurzen Seitenästchen oder sitzend; die entleerten Hüllen werden, wie bei Sphacelaria, von der
Stielzelle durchwachsen.

Vorkommen. Sublitoral in der westlichen Ostsee, im Winter.

Bemerkung. Leider ist mir in Bezug auf die Unterschrift der Tafel 40 mit dieser Pflanze ein Versehen
passirt, dieselbe muss Rhodoch. minutum SUHR sp. lauten, weil dies der ältere Name ist. Dass das Calkthamnion
minutum SUHR in Flora 1. c. mit der Taf. 40 abgebildeten Pflanze identisch ist, ergaben die von mir untersuchten
Originalexemplare des SuHr'schen Herbariums. Aber auch Callithamnion minutissimum SUHR bei KÜTZ. |. c.
gehört sicher hierher und nicht zu Chantransia virgatula, wohin es von HAucK (Meeresalgen S. 41) gestellt wurde.

Erklärung der Abbildungen.

Fig. 1. Rasen des Pflänzchens an einem Stück Zastigiaria, daneben ein abgelöster Büschel. (4).

Fig. 2. Auf dem Substrate kriechende Horizontalfäden mit den Basalstücken dreier aufrechter Aeste. (?2°).

Fig. 3. Ein verzweigter aufrechter Ast, um die Anordnung der Tetrasporangien und die langen einzelligen
Haare zu zeigen. (229).

Fig. 4. Ein fructificirender Seitenast mit einem gestielten und einem sitzenden Tetrasporangium. Die
Chromatophoren sind in den Zellen erkennbar. Eine noch kurze farblose Haarspitze ist durch Auswachsen der

Tragzelle zur Seite gedrängt, ein ungewöhnlicher Fall. (129°).

61

Tafel 41. Fig. ı bis ı2.

Genus Ectocarpus Lync#.

Gattungscharakter s. S. 21.

Zectocarpus Reinboldi Rkr.

Bildet Büschel von ro bis 30 Centimeter Länge. Fäden reich verzweigt, die Hauptstämme bis zu 0,04 Millimeter
dick, die Aeste beträchtlich zarter. Der Spitze eines jeden Astes ist ein langes, farbloses Haar mit basaler Zell-
theilung aufgesetzt. Das Längenwachsthum der Fäden und Aeste vollzieht sich durch nicht localisirte intercalare
Ouertheilung der Gliederzellen. Chromatophoren kleine, rundliche Scheiben. Pluriloculäre Sporangien seitlich an
den Aesten, mehr weniger einseitswendig, sitzend, selten kurz gestielt oder intercalar dem Zweige eingefügt, eiförmig-
walzlich. Die Zoosporen werden seitlich aus jeder Oberflächenzelle des Sporangiums entleert.

Vorkommen. An grösseren Algen bei Helgoland, im Juni 1888 von Major REINBOLD gesammelt.

Erklärung der Abbildungen.

Fig. ı. Zweigspitze mit terminalem Haar h?. Die Endzelle des Zweiges hat einen Seitenast gebildet,
welcher in das Haar h'! ausläuft; bei a die jüngere Anlage eines zweiten Seitenastes. (22°).

Fig. 2. Weiter entwickeltes Zweigsystem mit einigen intercalar getheilten Gliederzellen ; h! h? h? verschiedene
Altersstufen von Haaren, aa junge Anlagen von Seitenästen. (22°).

Fig. 3. Scheinbar dichotome Verzweigungsstelle, links der Seitenast. (22°).

Fig. 4. Junge Anlage eines Sporangiums s. (229).
Fig. 5. Drei Sporangien-Anlagen verschiedenen Alters s. (#29).

6

Fig. Ast mit reifen gefüllten sowie theilweise und ganz entleerten Sporangien. (22).

Fig. 7. Ein ähnlicher Ast mit theilweise gestielten Sporangien. (129).
Fig. 8. Ein theilweise entleertes, sitzendes Sporangium von besonderer Grösse. (?2°).
Fig. 9. Ein gestieltes Sporangium mit aufgesetzter Haarspitze ; aus dem Stiel wächst ein kleineres Sporangium

seitlich hervor. (22°).

Fig. ı0. Entleertes intercalares Sporangium ; der Zweig trägt noch die Anlagen zweier seitlicher
Sporangien. (?29).

Fig. 11. Theilweise entleertes Sporangium. (82°).

Fig. ı2. Ganz entleertes Sporangium, in den Aussenwänden der Zellen die Austrittsöffnungen der Zoo-
sporen. (829).

Tafel 41. Fig. ı3 bis 25.

Genus Pogotrichum Rkr.

Unverzweigte, büschelförmig beisammenstehende, fadenförmige Thallome von radiär gebautem Querschnitt
und intercalarem Wachsthum. Vegetations-Fäden aus mehreren oder, doch seltener, aus nur einer Längsreihe von
Zellen gebildet. Pluriloculäre Sporangien intercalar in den Thallus eingesprengt, nur aus einigen der äusseren oder
auch aus sämmtlichen Zellen eines Querschnitts gebildet; bei einreihigen Individuen durch Theilung einzelner
Gliederzellen in viele kleine Zellen entstanden.

62

Pogotrichum filiforme Re.

Bildet auf dem Laube von Zaminaria saccharina Büschel von 10 bis 30 Centimeter Länge; Fäden einem
einschichtigen, scheibenförmigen, dem Substrate aufliegenden Basallager entspringend, 0,015 bis 0,06 Millimeter dick.
Seitliche Haare fehlen.

Vorkommen. Bei Helgoland, im Juni 1888 von Major REINBOLD gesammelt.

Bemerkungen. Diese Pflanze, welche ich zum Typus einer besonderen Gattung erhoben habe, verbindet
die Genera Desmotrichum und Litosiphon. rsteres weicht ab durch den bilateralen Bau des Thallus, letzteres
steht durch seinen radiären Bau unserem Pogotrichum sehr nahe, besonders in der Species ZzZoszphon Laminariae
LYNGB. sp., welche, im nördlichen atlantischen Ocean an den Küsten Englands und Skandinaviens zu Hause, vor-
zugsweise den Thallus von Alaria esculenta bewohnt'). Ich habe lange geschwankt, ob ich Pogotrichum flliforme,
sicher eine bislang nicht beobachtete Species. generisch zu Zitosiphon ziehen sollte oder nicht. Allein der Umstand,
dass man von Zitosiphon nur die uniloculären Sporangien kennt, von Pogotrichum fliforme nur pluriloculäre, schien
mir in Verbindung mit anderen trennenden Momenten die Vereinigung vor der Hand nicht zu gestatten. Es mag
aber sein, dass eine umfassendere Kenntniss der Phäosporeen wie noch in manchen anderen Fällen so auch in
Bezug auf Pogotrichum zu einer anderen Abgrenzung der Gattungen führen wird, als sie zur Zeit besteht. Auf
keinen Fall ist aber daran zu denken, dass Pogotrichum filiforme etwa die pluriloculäre Sporangien tragende Pflanze
von Litosiphon Laminariae sein könnte. Denn wenn auch der Querschnitt von letzterem, (vgl. Fig. A ; die uniloculären
Sporangien sind durch einen Ton hervorgehoben) einigermassen dem Querschnitt von Pogotrichum entspricht,
obwohl ZzZosiphon im Querschnitt weit mehr Zellen zeigt, als die dicksten Fäden von Zogorrichum, so weicht es
doch namentlich dadurch ab, dass (Fig. B, Zz£osiphon durch stärkere Linien mit einfachem, das Alaria-Gewebe

Fig. A.

Litosiphon Laminariae,

Querschnitt eines fruc-
tifieirenden Thallus.
Pluriloculäire Sporan-
gien durchkörnigen Ton
hervorgehoben. (?%°),

Fig. B.
Litosiphon Laminariae. Längsschnitt der Basal-
theile dreier Pflänzchen aus einem grösseren
Büschel, deren Verlängerungen hyphenartig in
das Gewebe von Alaria esculenta eindringen. (*2°),

durch zartere Linien mit doppeltem Zellenkontour unterschieden) die nach unten sich stark verjüngenden Thallome
sich hier mit einem dichten Filz abwärts wachsender Wurzelfäden umgeben, welche hyphenartig ebenso wie die
fadenförmigen und verzweigten Basalstücke der Thallome selbst parasitisch zwischen die Zellen des Laubes
von Alaria eindringen. Letzteres wird hierdurch auch zu eigenthümlichen Wucherungen angeregt und bildet
unterhalb eines älteren Litosiphon-Büschels knotenförmige Anschwellungen. — Ausserdem trägt der Thallus von
L. Laminariae seitlich stehende Haare vom gewöhnlichen Phäosporeen-I'ypus.

Mir sind nur noch zwei Phäosporeen genauer bekannt, welche in den engeren Verwandtschaftskreis der
soeben besprochenen beiden Arten gehören. Die eine ist ZiZosiphon pusillus CARM, sp. Derselbe unterscheidet
sich von Z. Zaminariae hauptsächlich durch seine Grösse, die uniloculären Sporangien besitzen die gleiche Stellung
wie bei diesem, seitliche Haare sind ebenfalls vorhanden. Die Thallome entwickeln an ihrer Basis Wurzelhaare

1) Wohin Kürzıng’s Desmotrichum Laminariae gehören mag (Spec. Alg. p. 470, Tab. phyc. VI Taf. 4), ist mir nicht klar geworden.
Nach der Beschreibung soll der Thallus bandförmig, also bilateral, sein,

63

und endigen blind in der äusseren Gewebeschicht von Chorda Filum, ohne sich aber weiter darin auszubreiten.
Junge Pflänzchen bestehen aus einfachen Fäden mit intercalarer Zelltheilung.

Die andere Art wurde kürzlich!) von THOMAS JOHNSON an der Westküste von Irland auf Alaria esculenta
entdeckt. Ich halte sie für eine zweite Species meines Genus Pogotrichum. Die Individuen mit pluriloculären
Sporangien stimmen mit den dünnfädigen Exemplaren von ?. filiforme überein, doch dringen ihre Basalstücke in
das Gewebe von Alaria ein, auch sind die Fäden viel kürzer. Daneben kommen aber auch Individuen mit uni-
loculären Sporangien vor, welche denjenigen von Zitosiphon Laminariae gleichen. Es ist nicht zu leugnen, dass
durch diese Pflanze, über welche Herr JOHNSON demnächst eingehende Mittheilungen veröffentlichen wird, die
Gattungen Pogotrichum und Litosiphon einander noch näher gerückt werden, dennoch trage ich Bedenken, beide
schon jetzt zu vereinigen. Vielleicht hätte ich eben solches Bedenken gehegt, für Pogotrichum filforme einen
eigenen Gattungstyp zu bilden, wäre mir vor dem Druck der Taf. 41 die JOHNSON’sche Pflanze bekannt gewesen.
Allein mag man auch später das Genus Pogotrichum wieder mit Zztosiphon vereinigen, stets wird Pogofrichum eine
Nebengattung oder Sektion eines solchen Sammelgenus darstellen und darum halte ich die Trennung vorläufig
aufrecht. Ich glaube, ehe wir die Vereinigung eintreten lassen, thun wir gut, das Auffinden von Pflanzen mit
pluriloculären Sporangien von ächten Litosiphon-Arten abzuwarten ; sollte deren Bildung ganz mit denen von
Pogotrichum übereinstimmen, so würde auch ich für die Vereinigung sein. Ein nicht unwichtiges Unterscheidungs-
merkmal zwischen Pogotrichum und Litosiphon ist jedenfalls dies, dass die beiden Arten von Pogotrichum einen
Thallus besitzen, der bald aus mehreren, bald nur aus einer Längsreihe von Zellen besteht, also in dieser Hinsicht
schwankt; während der Thallus von Zitosiphon pusillus und ZL. Laminariae im Querschnitt constant zahlreiche
Zellen aufweisen.

Erklärung der Abbildungen.
Pogotrichum filiforme.

Fig. 13. Ein Büschel der Pflanze am Laube von Zaminaria haftend. (1).

Fig. 14. Die Basalscheibe b dem Laminaria-Thallus Z. aufsitzend; tt Basalstücke von Fäden. (229).

Fig. 15. Ein junger Faden mit intercalarer Ouertheilung der Zellen; s Spitze, b Basis. (199).

Fig. 16 Ein noch jüngerer Faden. (129).

Fig. 17. Zwei Gliederzellen eines älteren Thallus ohne Längswände, um die Gestalt der Chromatophoren
zu zeigen. (82°).

Fig. 18. Flächenansicht eines älteren mehrreihigen aber sterilen Thallus. (229).

Fig. 19. Querschnitt eines jüngeren mehrreihigen Thallus mit eingetretener Quadrantentheilung. (#29).

Fig. 20. Querschnitt eines älteren sterilen Thallus mit weiter vorgeschrittener Zelltheilung. (*2°).

Fig. 21. Querschnitt eines Thallus mit einseitig entwickeltem pluriloculärem Sporangium. (9°).

Fig. 22. Schnitt durch ein pluriloculäres Sporangium, welches sämmtliche Zellen des Thallus-Ouerschnitt
umfasst. (#29).

Fig. 23. Längsschnitt eines aus einfacher Zellreihe bestehenden Thallus; aus der mittleren Zelle hat sich
durch eine Längswand ein pluriloculäres Sporangium s abgespalten. (*2°).

Fig. 24. Flächenansicht eines mehrreihigen Thallus mit pluriloculären Sporangien s! und s®. (*2°).

Fig. 25. Dünner einreihiger Thallus, von welchem eine ganze Anzahl benachbarter Gliederzellen sich in
pluriloculäre Sporangien umgewandelt hat ; e Austrittstelle der Zoosporen. (*#2°).

1) Die Pflanze wurde mir von Herrn Jonnson, nachdem Tafel 41 bereits fertig gedruckt war, in Spiritus conservirt freundlichst zur
Ansicht geschickt.

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65

Tafel 42, 43, 44, 45, 46, 47 und 48. Fig. ı bis 7.

Genus Sphacelarıa LvnG#.

Die Pflanzen bestehen aus vegetativen Axen mit kleiner Basalscheibe ; die Seitenäste der ersteren entspringen
niemals aus der Scheitelzelle.

Axen aus mehreren Längsreihen von Zellen aufgebaut, unberindet oder mit einer bald rudimentären, bald
vollständigen, aus vertical herablaufenden Wurzelfäden gebildeten Rinde bekleidet. Normale Aeste in akroskoper
Folge seitlich entspringend, zerstreut oder in opponirten, zweigliedrigen Wirteln. Kurztriebe bald scharf abgesetzt,
bald von den Langtrieben kaum unterscheidbar. Oft kleine, adventiv entspringende Brutäste. Fruchtstiele in meist
adventiver Stellung an der Axe (dem Centralkörper), einfach oder verzweigt, sehr selten fehlend. Uniloculäre und
pluriloculäre Sporangien meistens auf verschiedenen Individuen.

Sphacelaria cirrhosa Rorn sp.

Sehr vielgestaltig, bildet Räschen von 0,3 bis 3 cm Höhe an Steinen und grösseren Algen. Axen bald
unregelmässig, bald mehr weniger fiederig verzweigt, in letzterem Falle die Kurztriebe deutlich gegen die Lang-
triebe abgesetzt. Brutäste mit verlängerten, cylindrischen Strahlen, meistens dreistrahlig, seltener zweistrahlig. An
einigen Formen herablaufende Wurzelfäden. Sporangien einzeln an den Seitenaxen auf kurzen, einzelligen Frucht-
stielen ; die uniloculären kugelig, die pluriloculären länglich-elliptisch, an der Spitze etwas abgestumpft.

Vorkommen. Im nördlichen atlantischen Ocean verbreitet; nördliches Eismeer ; Küste von Japan.

Bemerkungen. Ausser der typischen Form, zu welcher die 5p%. pennata KÜTZ. gehört, wurde in der
westlichen Ostsee auch eine kleinere, unregelmässig verzweigte Form beobachtet, welche jedenfalls der 5P%. irregularıs
KÜTZz. zum Theil entspricht, besonders in grösserer Tiefe an Fastgziaria wächst und noch um Weihnachten mit
uniloculären Sporangien gesammelt wurde. Ausserdem ward bei Kiel steril die var. patentissima GREV. gefunden,
welche sich durch sehr regelmässig fiedrige Verzweigung mit fast rechtwinkelig abstehenden Seitenästen unterscheidet.
Im Kieler Universitätsherbarium ist auch eine von NOLTE im Kieler Hafen gesammelte forma aegagropıla vorhanden,
die aus dicken, mehr weniger kugelrunden Ballen besteht. Diese Form ist nicht angewachsen, die Aeste strahlen
von einem Mittelpunkt nach allen Seiten aus, vermuthlich ist dieser Zustand dadurch entstanden, dass vom Substrate
losgelöste Rasen der gewöhnlichen Form, auf dem Grunde einer geschützten Bucht liegend, zu derartigen monströsen
Ballen ausgewachsen sind. Eine ähnliche forma aegagropla vermag auch Fastigiaria furcellata zu bilden, ich
habe dieselbe zweimal gefunden, das eine Exemplar war fast genau kugelig und besass die Grösse eines
Menschenkopfes.

Aus SpA. cirrhosa sind von den verschiedenen Autoren zahlreiche Arten gemacht worden. Hier möge
zur Synonymie der Species nur noch bemerkt sein, dass mir die von REINSCH!) auf Taf. 29, 33, 34, 35 abgebildeten
Sphacelarien sicher zu cirrhosa zu gehören scheinen, wahrscheinlich auch die Formen der Taf. 30 und 35a; letztere
ist der f. patentissima GREY. ähnlich. Auch die SpA. reticulata LYNGB. trage ich kein Bedenken hierher zu ziehen.
Ein Originalexemplar des Kieler Herbars ergänzt LYNGBYE’s Beschreibung?) und die Abbildung auf Taf. 1600 der
Flora danica dahin, dass hier ein seltsamer Zustand der SpA. cirrhosa vorliegt, der vorwiegend aus kriechenden,
verzweigten Wurzelfäden besteht und wohl durch abnorme Vegetationsbedingungen herbeigeführt sein dürfte.

LvNGBYE selbst scheint der Meinung gewesen zu sein, dass die Sp%. reticulata wohl zur Sph. pennata
(= cirrhosa) gehören möge. Ich habe bei Kiel Anfänge eines solchen reticulata-Zustandes beobachtet, indem
lange, kriechende, sich verzweigende Wurzelfäden aus einzelnen Gliederzellen von Spkhacelaria cirrhosa hervorwuchsen;

1) Contributiones ad algologiam et fungologiam.
®) Tentamen Hydroph. dan. p. 106.

in einem Falle sah ich solche Wurzelfäden zu zweien aus einer Scheitelzelle entstehen, welche sich durch eine
Längswand getheilt hatte (Taf. 42 Fig. 8). Sonst können aus den Scheitelzellen niederliegender Axen Haftscheiben
hervorwachsen, aus denen wiederum aufrechte Axen entspringen; auf diese Weise kommen kriechende Formen
von Sph. cirrhosa zu Stande. —

Sph. cirrhosa ist die einzige Art, bei welcher das Austreten von Schwärmsporen aus den uniloculären
Sporangien zur Beobachtung gelangte. Diese Schwärmsporen zeichnen sich vor den Schwärmsporen anderer
Phäosporeen dadurch aus, dass sie gewöhnlich vier, seltener 3 oder 5 Chromatophoren enthalten, während man
sonst normal in den Schwärmern der Phäosporeen nur einen Chromatophor findet; die beiden Cilien entspringen
an einem braunrothen Pigmentflecke, welcher einem der Chromatophoren anliegt (Taf. 43 Fig. 5).

Es wäre von Interesse festzustellen, ob diese grössere Zahl von Chromatophoren auch den Schwärmsporen
anderer Sphacelariaceen zukommt.

Sphacelaria racemosa Gkev. var. arctica Harv.

Bildet 1—7 cm hohe Büschel. Axen unregelmässig verzweigt, dicker und im Querschnitt vielzelliger, als
bei Sph. eirrhosa. Hauptaxen an den kräftigeren Formen durch Wurzelfäden mehr weniger berindet. Brutäste
unbekannt. Uniloculäre Sporangien auf mehr oder weniger reich verzweigten Fruchtstielen, eiförmig, mitunter fast
kugelig. Pluriloculäre Sporangien ebenfalls auf verzweigten, seltener auf einfachen Fruchtstielen, eiförmig-eylindrisch.

Vorkommen. Nördliches Eismeer; nördlicher atlantischer Ocean.

Bemerkungen. Zu den auf S. ır und 12 meiner Beiträge!) gegebenen Erläuterungen ist hier nur
Weniges hinzuzufügen. Die Pflanze findet sich in der westlichen Ostsee stets in grösserer Tiefe, ihre Haftscheiben
sind gewöhnlich auf Steinen oder Muschelschalen entwickelt, selten auf anderen Algen (Taf. 44 Fig. 8). Mitunter
sind die primären Basalscheiben sehr klein und dann ist die Pflanze durch ihre zahlreichen an der Spitze etwas
verbreiterten Wurzelfäden am Substrate befestigt (Taf. 44 Fig. 9).

Die gewöhnlich vorkommende erste Entwicklungsstufe eines der seitenständigen Haare ist Taf. 45 Fig. 2
dargestellt, Fig. 3 ist ein seltenerer Fall, in welchem zunächst durch eine schräge verlaufende Wand eine Mutterzelle
aus einer Rindenzelle herausgeschnitten wird, welche einer Haarmutterzelle entspricht, wie sie sonst bei SpAacelariaceen
typisch aus der Scheitelzelle entsteht; diese Mutterzelle theilt sich durch eine Querwand und nur die obere Zelle
wächst zu einem Haare aus. In Fig. 5 ist der Anfang eines Haarbüschels gezeichnet.

Die var. arctzca unterscheidet sich von der /orma typica durch den robusteren Habitus, die zahlreichen
Wurzelfäden und die an uniloculären Sporangien ärmeren Fruchtstände.

Die forma pinnata ward bisher nur im losgerissenen Zustande beobachtet.

Sphacelaria olivacea Princsı.

Pflanzen niedrig, meist in dichten Rasen. Axen wenig verzweigt, ein Gegensatz von Lang- und Kurztrieben
kaum ausgebildet. Uniloculäre Sporangien eiförmig, auf längeren, einfachen oder verzweigten Fruchtstielen, seltener
endständig auf einem normalen Seitenaste. Pluriloculäre Sporangien kugelig. Brutäste selten, gabelig, mit zwei
verlängerten, cylindrischen Strahlen.

Vorkommen. Nördlicher atlantischer Ocean und nördliches Eismeer.

Bemerkung. Die Nordseepflanze ist höher als die der Ostsee und überzieht in dicht gedrängtem Rasen
Steine und Felsen des flachen Wassers.

Zu den S.7 der „Beiträge“ gegebenen Andeutungen möge hier noch hinzugefügt sein, dass auf die nähere
Verwandtschaft dieser Art mit ‚SpA. racemosa GREY. mir noch durch den Umstand hingedeutet zu werden scheint,
dass mitunter auch bei SpA. olivacea die Haare in Büscheln beisammen stehen. (Vgl. Taf. 46 Fig. 10, ıı hh).
Die Mutterzelle eines solchen Haarbüschels wird allerdings stets durch eine schiefe Längswand von der Scheitelzelle
der Axe abgegliedert.

Sphacelaria plumigera Hoınes.

Pflanze vom Habitus der Chaetopteris plumosa, 3 bis 10 Centimeter hoch. Langtriebe mit fast gleich langen,
in zweigliedrigen, opponirten Wirteln stehenden Kurztrieben besetzt; die Langtriebe ringsum durch dicht gedrängte,
vertical herablaufende Wurzelfäden berindet. Brutäste unbekannt. Uniloculäre Sporangien an den unberindeten
Kurztrieben auf mehrzelligen, verzweigten oder einfachen Fruchtstielen.

Vorkommen. Englische Nordseeküste. Helgoland.

!) Beiträge zur vergleichenden Anatomie und Morphologie der Sphacelariaceen. Cassel 1891.

67

Sphacelaria Plumula Zananv.

Pflanze ı bis 2 Centimeter hoch, fiederartig verzweigt. Langtriebe unberindet. Kurztriebe in zweigliedrigen
Wirteln. Brutäste wie bei Sp. /ribuloides. Sporangien unbekannt.
Vorkommen. Mediterrane und atlantische Küsten Europas (Helgoland).

Erklärung der Abbildungen.
Tafel 42. Sphacelaria cirrhosa.

Fig. ı. Büschel der typischen Form an einem Stück von Fucus vesiculosus haftend. (4).

Fig. 2. Thallusspitze einer etwas weniger regelmässig verzweigten Form mit jüngeren und älteren Brutästen b
und uniloculären Sporangien s. (3).

Fig. 3. A und B zwei Querschnitte aus einer Hauptaxe. (*2°).

Fig. 4. Aus einer Haftscheibe entspringt eine Anzahl von Axen, die theilweise niederliegend sich ver-
zweigen und aus ihren Scheiteln secundäre Haftscheiben gebildet haben. (22).

Fig. 5. Stück einer Pflanze mit uniloculären Sporangien s. (22°).

Fig. 6. Zwei einander gegenüber stehende uniloculäre Sporangien, davon das eine entleert. (17°).
Fig. 7. Ein uniloculäres Sporangium, welches sich an einem Brutaste entwickelt hat. (100),
Fig. 8. Wurzelfäden, die aus den Hälften einer durch die Längswand getheilten Scheitelzelle hervor-
wachsen. (190).

Tafel 43. Sphacelaria cirrhosa.

Fig. 1. Chromatophoren in Zellen der Axe. (120°).

Fig. 2. Chromatophoren einer sehr alten Zelle der Axe, die sich mehr bandförmig gestreckt haben und
dabei schmäler geworden sind. (129°).

Fig. 3. Chromatophoren in den Randzellen der Haftscheibe. (1299).

Fig. 4. Oberflächenansicht eines uniloculären Sporangiums mit differenzirten Schwärmsporen. (1200).

Fig. 5. Schwärmsporen. (1299).

Fig. 6. Zweig mit pluriloculären Sporangien. (22°).

Fig. 7 bis 12. Jüngere Stadien pluriloculärer Sporangien, nach Spiritusmaterial gezeichnet. (20).

Fig. 13. Optischer Längsschnitt der Fig. ı2. (*2°).

Fig. 14. Oberflächenansicht eines pluriloculären Sporangiums. (120°).

Tafel 44. Sphacelaria racemosa var. arctıca.

Fig. ı. Ein Büschel der Pflanze, welches an einer Miessmuschel befestigt war. 4).

Fig. 2. Ein einzelner Hauptast, frei präparirt. (4).

Fig. 3. Querschnitt durch den oberen Theil einer Hauptaxe. (*2?9).

Fig. 4. Querschnitt durch den mittleren Theil einer Hauptaxe mit einem quer getroffenen Wurzelfaden. (22°).

Fig. 5. Querschnitt durch den mittleren Theil einer Hauptaxe, etwas tiefer geführt als Fig. 4; es sind
4 Wurzelfäden quer getroffen, davon der eine mit Längstheilung. (*2).

Fig. 6. Ouerschnitt durch den untersten Theil einer Hauptaxe, von zahlreichen, quer getroffenen Wurzel-
fäden umgeben, welche durch Gallerte verbunden sind. In zahlreichen Wurzelfäden mehrfache Längswände. (#2).

Fig. 7. Ursprungstelle eines jungen Wurzelfadens an einer Axe. (#29).

Fig. 8. Zwei noch junge Basalplatten A und B, welche sich auf einem Stück Florideen-Thallus entwickelt
haben; aus diesen Basalplatten entspringen Axen, deren zwei hell getonte Wurzelfäden h entwickelt haben. Einige
der Axen sind nicht aufrecht, sondern dem Substrate angeschmiegt gewachsen und entwickeln an ihren Spitzen
secundäre Haftscheiben. (°P).

Fig. 9. Unteres Ende einer Axe, die in lauter Wurzelfäden endigt, welche sich zum Theil an ihrer Spitze
ein wenig haftscheibenartig verbreitern; bei a entspringt eine aufrechte Axe einer solchen Haftscheibe.

Tafel 45. Sphacelaria racemosa var. arctica.

Fig. 1. Stück einer im Frühjahr gesammelten Axe mit Büscheln seitenständiger Haare. (3%).
Fig. 2—5. Entwickelungsstadien seitenständiger Haare. (?2°).
Fig. 6. Ein von der Spitze eines seitlichen Kurztriebes abgegliedertes Haar. (2.20).

19

68
Fig. 7. Scheitel, einer wachsenden Hauptaxe. (32°).
Fig. 8. Stück einer Axe mit uniloculären Sporangien. (22°).
Fig. 9 und ıo. Stücke einer Axe mit pluriloculären Sporangien. (22°).
Fig. 11. Die forma pinnata. (4).
Fig. 12. Wachsende Spitze der forma pinnata. (%).

Tafel 46. Sphacelaria olivacea.

Fig. ı. Pflänzchen der kleineren Ostseeform, auf einem Quarzstückchen haftend. (+).

Fig. 2. Ein ähnliches Pflänzchen mit seiner Basalscheibe vom Substrate gelöst, mit uniloculären Sporangien ;
e entleerte Sporangial-Hülle, d durchwachsende Sporangien, t ein scheinbar auf einer Hauptaxe terminal stehendes
Sporangium, dessen Stiel aus einer Zelle der Wundfläche einer abgebrochenen Hauptaxe hervorgesprosst ist. (229).

Fig. 3 und 4. Axenstücke mit verzweigten Fruchtstielen. (229).

Fig. 5. Axenstück mit kurzen, unverzweigten Fruchtstielen. (229).

Fig. 6. Auf der Spitze eines Fruchtstiels stehendes uniloculäres Sporangium von ausnahmsweise kugeliger
Gestalt. (229).

Fig. 7. Sporangium sp., welches sich innerhalb des abgestorbenen Stückes einer Axe entwickelt hat. (220).

Fig. 8. Längsschnitt durch den Ursprung einer Axe aus der Basalplatte. (32°).

Fig. 9. Einzeln stehende Haare h, deren Anlage in der Scheitelzelle stattgefunden hatte. (220).

Fig. 10 und ıır. Haarbüschel. (229).

Tafel 47. Sphacelaria plumigera.

Fig. ı. Eine kleinere Pflanze im sterilen Zustande. (4).

Fig. 2. Weachsender Scheitel eines Langtriebes. (3).

Fig. 3. Querschnitt durch den mittleren Theil einer Hauptaxe dicht über der Ursprungsstelle zweier Fieder-
äste. Der Centralkörper der Axe von vielen quer getroffenen Wurzelfäden umgeben. (32°).

Fig. 4. Längsschnitt aus einer Hauptaxe; das Gewebe des Centralkörpers ist scharf gegen das Pseudo-
parenchym der nahezu vertical herablaufenden Wurzelfäden abgesetzt. (220).

Fig. 5. Basalstück eines Fiederastes mit uniloculären Sporangien. (22°).

Tafel 48. Fig. 1-7. Sphacelaria Plumula.
Fig. 1. Helgoländer Pflanzen. (4).
Fig. 2. Spitze einer Hauptaxe. (3%).
Fig. 3. Querschnitt einer Hauptaxe. (#90),
Fig. 4 bis 6. Jünngere Entwicklungsstufen von Brutästen. (22°).
Fig. 7. Ein ausgebildeter Brutast. (22°).

Tafel 48. Fig. 8 bis 14.

Genus Stypocaulon Kurz.

Die Anlagen sämmtlicher Seitenäste werden®von der Scheitelzelle durch eine schräge Wand abgegliedert, sie
heissen Astzellen ; eine solche Astzelle scheidet nach oben stets eine Axelzelle ab. Aus der Axelzelle entstehen
normal an sterilen Aesten Haare, an fertilen Aesten ein vielzelliges, axiles Placentargewebe, dem zahlreiche,
einen dichten Sorus bildende Sporangien entspringen.

Stypocaulon scoparium L. sp. forma spinulosum Kırıım.
Syn. Sphacelaria spinulosa LNYNGB.

Pflanzen in ein bis zwei Centimeter langen Fragmenten lose am Boden liegend, nie angewachsen, unregel-
mässig verzweigt, ohne Wurzelfäden. Aeste mit dornartigen Kurztrieben besetzt, welche in der Regel paarweise

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69

beisammen stehen; und zwar entwickelt sich ein Dorn eines solchen Paares aus einer von der Scheitelzelle
abgegliederten Astzelle, der andere aus deren Axelzelle. Bei einzeln stehenden Dornen ist entweder derjenige
der Astzelle oder derjenige der Axelzelle verkümmert. Immer steril, ist die Pflanze als ein Degenerationsprodukt
der Hauptform anzusehen.

Vorkommen. Norwegische Küste, Skagerrack, Kattegat, westliche Ostsee.

Erklärung der Abbildungen.
Tafel 48. Fig. S—ı14. Stypocaulon scoparium f. spinulosum.

Fig. 8. Unweit Kiel gefundenes Bruchstück der Pflanze. (4).

Fig. 9. Stück eines Astes mit den paarweis stehenden dornartigen Kurztrieben. (3).

Fig. 10. Ansatzstelle eines Paars von Kurztrieben. (229).

Fig. ı1. Spitze eines Astes mit zwei Anlagen von Dornpaaren. (109),

Fig. 12. Scheitel mit einer Astzelle, welche nach Oben eine Axelzelle abgeschieden hat. (229)
Fig. 13. Scheitel mit einer noch ungetheilten Astzelle. (229).

Fig. 14. Querschnitt eines Astes. (220)

Tafel 49 und 50.

Genus Ghaetopteris Kürz.

Die normalen Seitenäste entwickeln sich wie bei SpAacelaria. Die Axen bestehen aus unregelmässig ver-
zweigten Langtrieben, welche mit zweizeiligen, in opponirten zweigliedrigen Wirteln stehenden Kurztrieben besetzt
sind; der Scheitel des Langtriebes ragt weit über die jüngsten Kurztriebe hinaus. Die Bildung seitlicher Langtriebe
erfolgt dadurch, dass die Anlagen einzelner Kurztriebe zu Langtrieben auswachsen, niemals durch Theilung der
Scheitelzelle der Hauptaxe. Die Langtriebe sind bekleidet mit einer gegen den Centralkörper scharf abgesetzten
pseudoparenchymatischen Rinde, die aus kurzen, schräge nach abwärts gerichteten, verzweigten Zellreihen gebildet
wird. Die Fruchtstiele entspringen als Adventiväste aus der äussersten Rindenschicht der Langtriebe.

Chaetopteris plumosa Lynce. sp.

Pflanze 4 bis 13 Centimeter hoch, elegant fiederartig verzweigt
Uniloculäre und pluriloculäre Sporangien auf verschiedene Pflanzen.
Vorkommen. Nördliches Eismeer, nördlicher atlantischer und nördlicher grosser Ocean.

‚ gefiederte Aeste von eilanzettlichem Umriss.

Erklärung der Abbildungen.
Tafel 49. Chaetopteris plumosa.

Fig. ı. Von der Schale einer Mya arenaria erheben sich drei junge und eine alte, fructificirende Pflanze,
wie man sie im Winter findet; die Fiedern sind grossentheils abgefallen und dafür die Aeste mit Fruchtstielen
bedeckt. Links daneben ist frei schwebend ein Stück der sterilen Sommerpflanze gezeichnet. (4).

Fig. 2. Scheitel eines wachsenden Thallus mit zweigliedrigen, opponirten Astwirteln. (129).

Fig. 3. Ein im Frühjahr gesammelter, abnorm gebildeter Zweig, an welchem bei W fünf Aeste im Wirtel
stehen. Ausserdem ist der Beginn der Rindenbildung erkennbar. (9).

Fig. 4 und 5. Erste Entwicklungsstadien der Rindenbildung in der Flächenansicht. (#29).

Fig. 6. Bildung zweier Rindenfäden im Längsschnitt; mm die äussere Zellwand des Centralkörpers. (2°).

70

Fig. 7. Längsschnitt aus der an den Centralkörper angrenzenden innersten Rinde einer älteren Pflanze ;
mm Aussenwand des Centralkörpers, rechts davon die Rinde; bei p die dünne Zellwand, durch welche ein
Rindenfaden gegen die Mutterzelle abgegrenzt ist. (*2°).

Fig. 8. Basalscheibe mit einer aus der Mitte hervorwachsenden aufrechten Axe, beide von Rinde über-
wallt. Die Rinde, welche die Basalscheibe bedeckt, besteht aus den pseudoparenchymatisch verwachsenen Endigungen
der von der Axe erzeugten Zellreihen, aus den Zellen der Basalscheibe wachsen direct keine Rindenfäden hervor.
Hingegen sieht man, dass die Axe bereits entstand, als die Basalscheibe erst zwei Zellschichten dick war, und dass
die Basalscheibe dann selbstständig in die Dicke wuchs, den unteren Theil der Axe einhüllend. (22°).

Tafel 50. Chaetopteris plumosa.

Fig. 1. Keulenförmiges Ende eines kurzen Fiederastes; ob solche, nicht selten vorkommende Bildungen
als Brutäste aufzufassen sind, konnte nicht ermittelt werden. (#2),

Fig. 2. Stück einer Pflanze mit pluriloculären Sporangien in der Aussenansicht. (#7).

Fig. 3. Axiler Längsschnitt aus einer fructificirenden Pflanze. Die beiden mit pluriloculären Sporangien
bedeckten Fruchtstiele entspringen der äussersten Rindenschicht. (22°).

Fig. 4. Querschnitt einer fructificirenden Pflanze mit uniloculären Sporangien. (22%).

Druck von Schmidt & Klaunig in Kiel,

6103

Taf!

Atlas deutscher Meeresalgen.

N

Stilonhora rhizodes Ehrh. sn.

Atlas deutscher Meeresalgen. Taf. 37.

Stilonhora tuberceulosa Fl. dan. sp.

38.

Taf:

Atlas deutscher Meeresalgen.

Halorhıza vaga Kütz.

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14.

Fig.17: Chordaria flagelliformis Fl.dan.sn.
Fig. 8-16: Chordaria divaricata Ag.

Atlas deutscher Meeresalgen. Taf: #0.

Rhodochorton minutissimum Suhr sn.

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Atlas deutscher Meeresalgen. Taf #1.

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Fig. 1-12. Ectocarpus Reinboldi Rke. Fig.13-25. Pogotrichum filiforme Rke.

‚Atlas deutscher Meeresalgen. Taf. 22.

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Taf: 43.

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Atlas deutscher Meeresalgen.

Sphacelaria racemosa Grev. var arclica.

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Snhacelaria racemosa Grev. var. arclica.

Taf. 40.

Atlas deutscher Meeresalgen.

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Fig. 1-7. Snhacelaria Plumula Zanard. Fig. 8-1%. Siypocaulon scoparıum f spinulosum

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Taf. 49.

Atlas deutscher Meeresalgen.

Chactonteris pilumosa Lyngb. sp.

Taf. 50:

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Chaetonteris plumosa Lyngb. sp.

\uftrage des Königlich Preussischen Ministeriums für Landwirtschaft, Domänen und Forsten

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_ herausgegeben im Interesse der Fischerei

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RR von der

n zur wissenschaftlichen Untersuchung
der deutschen Meere.

Erstes Heft. Tafel 1 bis 25. ;
In V rbindung, mit SDrerE, ScHöUTT. und -P. Kuckuck
sr Zn bearbeitet von Fr
22 2Dr.LREINKE
Berlin.
Paul Patiey.
1889.

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Prospect.

Die Algen des Meeres sind der Kunde des Naturforschers schwieriger zugänglich als die Pflanzen des
festen Landes, weil der Zutritt zu ihren Wohnstätten den Meisten verschlossen bleibt. Daher ist das Studium
dieser herrlichen Vegetationstypen durchweg zurückgeblieben hinter demjenigen der leichter erreichbaren und
meistens an jedem Orte cultivirbaren Landpflanzen, und selbst die Bestimmung der meisten Meeresalgen ist
schwer durchführbar und unsicher, sofern man nicht Originalexemplare der Autoren oder wirklich befriedigen

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Abbildungen zur Verfügung hat, wie sie bislang erst in wenigen Werken, z. B. ie französische
Botaniker PB und BORNET, BR wurden.

erforderlichen Beschreibungen, ist daher ein Bedürfniss unserer Zeit. Arak

Durch Herausgabe eines ersten Heftes von Abbildungen deutscher re hat di ;
zur wissenschaftlichen Untersuchung der deutschen Meere im Auftrage des Königlich preussischen Mi }
für Landwirthschaft, Domänen und Forsten den Versuch gemacht, die Ausfüllung der bezeichneten ei
unserer Daterattr anzubahnen.

botanischen Kreisen Fa wird, so sei für die Bo noch das Folgende BER var.
Die genannte wissenschaftliche Kommission, deren Sitz sich in Kiel befindet, hat die Auf
re und Biolzennen Ma > oz zu re im Interesse der deutschen

eines Fachmannes anzusehen. ii

Sollten sich der Fortsetzung des Werkes keine Hindernisse in den Weg. stellen, so ist be bsic ER
dem ersten Hefte noch drei andere von gleichem Umfange folgen zu lassen, so dass das. ‚ganze Wer
100 Tafeln abschliesst. Hierbei wird vermieden werden, solche Algen in den Kreis der Bearbeitung zu ziehen,
von denen bereits allseitig befriedigende Abbildungen vorhanden sind. Da in jedem Jahre etwa 5 bis 10 Tafeln
fertig zu stellen sind, so wird das zweite Heft, Tafel 26 bis 50 umfassend, wahrscheinlich in Lieferungen ä 5 Tafeln
erscheinen. Der Text ist derartig angeordnet, dass später das ganze Werk in systematischer Reihenfolge der P:
Gattungen gebunden werden kann, und bleibt es daher möglich, sowohl Text wie Tafeln gesondert zu binden,
als auch jeder Tafel den zugehörigen Text unmittelbar anzufügen. Au fr

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Atlas deutscher Meeresalgen.

Im Auftrage des Königlich Preussischen Ministeriums für Landwirthschaft, Domänen und Forsten

herausgegeben im Interesse der Fischerei

von der

Kommission zur wissenschaftlichen Untersuchung
der deutschen Meere.

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Zweites Heft. Lieferung I und II. Tafel 26 bis 35.

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In Verbindung mit P. Kuckuck

bearbeitet von

Dr. J. REINKE.

Berlin.
Daul'Parey.
1891.

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Atlas deutscher Meeresalgen.

Im Auftrage des Königlich Preussischen Ministeriums für Landwirthschaft, Domänen und Forsten

herausgegeben ım Interesse der Fischerei '

von der

Kommission zur wissenschaftlichen Untersuchung
der deutschen Meere.
Zweites Heft, Lieferung II bie V. -Tafel 36 bis 50

(Schluss.

In Verbindung mit Dr. P. Kuckuck

bearbeitet von

Dr. .].- REINKE,

Berlin.
Daul Parey.
1892.

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