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, AD. HOSTE, ÉDITEUR | G. MASSON, ÉDITEUR ; 


Rue des Champs, 47 120, Boulevard St Germain 


LE LIVRE 


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ORCHIDÉES 


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dei An. HOSTE, SUCCF. 


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RENANTHERA LOWII RCHB. F. 


PÉREEVEE 


DES 


PRCHIDÉES 


PAR 


LE COMTE O. DE KERCHOVE DE DENTERGHEM 


PRÉSIDENT DE LA SOCIÉTÉ ROYALE D'AGRICULTURE ET DE BOTANIQUE, A GAND 


OUVRAGE ILLUSTRÉ DE 310 GRAVURES 
ET DE 31 PLANCHES EN CHROMOLITHOGRAPHIE 


LIBRARY 
NEW YORK 
BOTANICAL 
GARDEN. 
GAND PARIS 
AD. HOSTE, ÉDITEUR G. MASSON, ÉDITEUR 
Rue des Champs, 47 120, Boulevard St Germain 


1894 


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NCT 6- 1909 


LIBRARY 
NEW YORK 
BOTANICAL 


PRÉFACE. or 


En écrivant ce livre sur les Orchidées, je voudrais 
donner aux amis de ces belles plantes, le résumé des 
notes et des documents que j'ai pu rassembler en cher- 
chant à les connaître. 

Comme beaucoup d'amateurs, j'ai commencé par 
admirer les Orchidées; mais je ne suis pas de ceux qui, 
voyant une belle fleur, disent comme le Perdican d'Alfred 
de Musset : « Je trouve qu’elle sent bon, voilà tout. » 

Leurs formes si variées, leurs brillants coloris m'ont 
charmé autant que leurs parfums. Je me suis attaché à 
ces protées du monde végétal, et, de même qu’on s’inté- 
resse à l’histoire d’amis qui vous sont chers, j'ai voulu 
comprendre et me rendre compte de l’organisation des 
plantes de cette magnifique famille. 

Les difficultés que j'ai rencontrées à mes débuts dans 
cette étude ont été très grandes. J'ai trouvé des livres de 
haute science, des monographies botaniques très bien 
faites, très savantes, parfois même si savantes qu'il ne 
m'était pas tout d’abord possible de les utiliser ni de les 
apprécier. Dans des livres plus généraux, par contre, les 


Er 
renseignements devenaient peu précis, inexacts, et quel- 
quefois d’une fantaisie tout à fait extra-scientifique. Ou 
bien encore il me fallait chercher dans cette multitude 
d'articles qui paraissent journellement dans les Revues 
les plus diverses. Je laisse à ceux-là qui ont essayé ce 
labeur, le soin de juger du temps et des efforts que j'ai 
dû y consacrer, la Bibliographie des Orchidées étant 
devenue dans ces dernières années une des plus riches de 
la science botanique. 

L’Orchidologie est maintenant une science à part dans 
la Botanique. Elle s'enrichit chaque jour de nouveaux 
documents; mais, combien sont-ils peu utilisables pour 
l'amateur! Les botanistes se plaignent parfois que les 
amateurs disparaissent, mais peut-être ne se préoccupent- 
ils pas assez de nous permettre d'utiliser leur science. 

Les nombreuses relations que j'ai avec des amateurs 
de tous les points du globe, m'ont permis de constater 
que presque tous se sont heurtés aux mêmes difficultés 
que j'avais rencontrées ; il semble qu’on leur demande un 
perpétuel recommencement d’efforts et de recherches. 
C’est en voyant ce résultat, c’est en voyant aussi bien des 
découragements, que j'ai conçu le dessin d'éviter aux 
autres le travail que j'ai dû faire. L'’effort que je leur 
aurai épargné, pourra se porter de quelque autre côté au 
grand profit de la science végétale. J'ai mis donc autant 
que possible à profit les travaux de mes devanciers, 
m'appliquant surtout à présenter un résumé fidèle de 
l'état actuel de nos connaissances sur cette famille. 

Les préoccupations de la vie politique m'ont empêché 
de consacrer à ce travail tout le temps auquel il avait 
droit : de là viennent les retards apportés à la publication 
de cet ouvrage, annoncé il y a près de cinq ans. Quelque 


= AU 


cher que me fût ce projet né dans mon esprit au lende- 
main de la publication de mon ouvrage sur les Palmiers, 
j'eus renoncé à l’exécuter si je n'avais trouvé chez quel- 
ques amis le plus précieux des encouragements et le plus 
puissant des aides. 

Au premier rang de ceux-ci, je dois placer M. C. Es. 
Bertrand, professeur à la faculté des sciences de Lille 
qui m'a tenu au courant des progrès incessants de la 


science botanique. Après avoir été le plus utile des con- 
seillers, il est devenu le plus dévoué des collaborateurs. 
Ses recherches personnelles sur l'anatomie des Orchidées 
m'ont permis de contrôler plusieurs points délicats et de 
combler diverses lacunes. MM. Alfred Cogniaux, le savant 
collaborateur de la Flora brasiliensis, et T. Durand, le 
conservateur au jardin botanique de l'État, m'ont com- 
muniqué, avec une confiance dont je leur suis profon- 
dément reconnaissant, l’un, ses notes considérables sur 
la Flore orchidéenne du Brésil, l’autre le manuscrit de 
son immense travail sur la répartition géographique des 
Orchidées. Leur concours m'a été des plus précieux tant 
par la communication de leurs travaux personnels que 
par le soin qu'ils ont apporté à la correction des épreuves. 

À côté d’eux, je tiens à remercier les praticiens qui 
depuis bien des années, m'ont tenu au courant de leurs 
essais, de leurs succès et de leurs revers. M. Lubbers, 
l’habile chef des cultures du Jardin botanique de l’État 
à Bruxelles, a pris la peine de me fournir des indications 
qui m'ont été infiniment utiles. 

Un ouvrage de botanique doit être accompagné, 
expliqué par de nombreuses gravures. La bienveillance 
des éditeurs du Gardeners Chronicle, du Manual of 
Orchidaceous plants, des Naturlichen Pflanzenfamilien et 


— VII — 
de la Revue de l'horticulture belge et étrangère m'ont permis 
de réunir un nombre considérable de dessins et de 
gravures d'Orchidées. J'ai pu ainsi illustrer ce livre et 
donner au lecteur les moyens de connaître les plantes 
dont je lui parle. 

En donnant une idée de la richesse et de la variété des 
Orchidées, en portant une active curiosité sur les matières 
si diverses que soulève leur étude, puissé-je attirer de 
nouveaux admirateurs à ces fleurs si variées, si intéres- 
santes, si captivantes ! C’est mon plus vif désir et ce sera 


ma plus douce récompense. 


Comte OswALD DE KERCHOVE DE DENTERGHEM. 


ESS ORCHIDÉES. 


INTRODUCTION. 


ÉNIGME ANTIQUE. — Les écrivains de l’ancienne Grèce 
rapportent que Cérès, la féconde et puissante déesse, avait une 
fleur favorite : le Cosmosandalon, la sandale du monde. Aux 
jours de fête consacrés à Hermione, des éphèbes vêtus de blanc, 
le front couronné de ces fleurs, figuraient dans les théories 
pieuses, chantant les louanges de la bienfaisante divinité. 

Cette plante sacrée était, paraît-il, une Orchidée. Laquelle ? 
Pendant des siècles, maint curieux chercha, sans succès, la 
solution de cette énigme botanique. Curtius Sprengel, de Halle, 
en fut l’'Œdipe. Le botaniste français Desfontaines avait trouvé 
aux environs de Corfou et sur le sommet du mont Garouna une 
frèle Orchidée aux sépales roses, au labelle convexe, oblong, 
presque carré, brun-violacé, velouté et maculé de taches glabres 
d'un violet foncé ou d'un gris d’acier, en forme d'un fer à cheval : 
c'était l'Ophrys Ferrum-equinum Desf. Ce fer à cheval parut à 
Sprengel une preuve suffisante, pour justifier la dénomination 
de Cosmosandalon. La jolie Ophrydée fut dès lors rangée dans 
la catégorie des plantes chères aux Dieux. C’est la seule mention 


I 


— 2 — 


— et encore combien hypothétique? — que nous trouvions de 
l'Orchidée dans la mythologie classique. 


LÉGENDES ORIENTALES.— Il n’en est pas de même en Orient. 
L’Orchidée émettant une fleur plus brillante, y fut plus remar- 
quée. Tous les peuples orientaux donnèrent à ces plantes une 
consécration religieuse. Au Japon, les habitants suspendent 
devant leurs portes des paniers dans lesquels fleurit le Dendrobium 
moniliforme. Ce porte-bonheur éclatant s'appelait Fu-Ran, au 
dire de Kaempfer(1). 

À Java, une des rares Orchidées à feuillage remarquable, le 
Macodes petola, est le sujet d’une jolie légende que Blume, le 
grand botaniste hollandais, a recueillie avec soin et transmise 
avec esprit. 

Ayant été témoin des insuccès et des désespoirs des jardiniers 
et des orchidophiles qui malgré leurs soins, voyaient dépérir cette 
précieuse plante, le botaniste hollandais, unissant à une profonde 
science un esprit vif, fin, un peu narquois, trouva, sans nul doute, 
plaisir à nous rapporter la tradition populaire attribuant une 
origine divine à cette admirable Orchidée. Les Javanais l’appellent 
Daun Petola, ce qui signifie, paraît-il, « herbe à feuille vivement 
colorée ressemblant à une admirable étoffe de soie. » Jadis, 
d'après les folkloristes de la Malaisie, apparut dans l’île de Java, 
une déesse éblouissante de beauté. Son corps était recouvert d’une 
admirable soierie d’un éclat incomparable. Elle était venue pour 
inspirer des sentiments élevés aux indigènes; mais ils étaient si 
grossiers, si pervertis que, non contents de rester sourds à ses 
exhortations, ils l’accablèrent d’injures et de blasphèmes et la 
forcèrent de chercher un abri dans des forêts inaccessibles, 
au fond de ravins escarpés. Fatiguée, lassée, attristée sur- 
tout, elle déposa son écharpe d’origine céleste sur des rochers 
moussus, à l’ombre d’arbres touffus, et s'en revint vers les 
hommes, non plus douce et clémente, mais farouche et irritée. 
A sa vue, les plus audacieux tremblèrent, les plus rebelles se 


(1) De plantis japonicis, p.864. D’après la Flore japonaise de MM. Matsura 
et Yatabe, ce nom populaire désignerait aujourd’hui une autre Orchidée, 
l'Oeceocladus falcata Regel. 


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D 


= A — 


soumirent; tous implorèrent la faveur de pouvoir conserver en 
signe de pardon son écharpe radiante. La belle déité ne put la 
leur accorder, mais, prise de pitié, elle leur permit de contempler, 
une dernière fois, le merveilleux tissu céleste, le pétola ; puis elle 
le remporta aux cieux. Heureusement pour les Javanais — et 
pour nos orchidophiles — les rochers sur lesquels la déesse avait 
déposé son voile, conservèrent quelques parcelles du pétola; 
celles-ci germèrent, reproduisant sur leurs feuilles l’image de la 
soierie d’origine divine. 

Telle fut l’origine céleste du Macodes petola ! 

A peine la naissance de la plante miraculeuse se fut-elle ébrui- 
tée, que de toutes parts, curieux et dévots accoururent pour la 
contempler. À travers les terres et les mers, ce fut un pèlerinage 
incessant. Chacun désira posséder cette merveille végétale. Les 
étrangers enviaient ce trésor aux habitants de la montagne 
sacrée où la Déesse s'était réfugiée. Quelques-uns voulurent 
emporter la petite Orchidée et, collecteurs préhistoriques, ils 
détruisirent même les Macodes petola qu’ils ne purent enlever 
afin de rester, seuls, heureux possesseurs de ce trésor inesti- 
mable. Mal leur en prit! 

Plus courte fut leur joie que le séjour fugace du Pétola sur 
les rochers. En vain prodiguèrent-ils à la jolie plante leurs 
soins, leurs parfums et leurs prières, elle dépérissait de jour 
en jour, et bientôt leurs mains sacrilèges n’eurent plus à 
soigner que quelques racines informes. Heureusement celles-ci 
leur furent enlevées par la déesse, et — connaissant déjà, paraît- 
il, la loi de l’influence des milieux sur les végétaux — reportant 
ces racines mourantes sur le rocher où jadis elle avait déposé 
son écharpe, elle les revivifia de son souffle. Les premiers 
bourgeons apparus, elle confia la petite Orchidée à la garde 
des fées montagnardes, anciennes protectrices de son Petola, — 
et c’est pourquoi, ajoute le narquois botaniste hollandais, la 
toute charmante Anectochile, le Macodes petola, dépérit chaque 
fois qu’on la cultive, loin de son pays natal et surtout dans nos 
serres! 


L’ORCHIDÉE DANS L'ANTIQUITÉ CLASSIQUE. — Que les anciens 
auteurs n’aient point parlé de ces Orchidées célébrées dans les 


nn — 
légendes orientales, rien de surprenant; mais comment expliquer 
leur silence au sujet des Orchidées de la Grèce et de l'Italie? 
Ils semblent les avoir ignorées : tout au plus, trouvons-nous 
parfois citées les vertus mystérieuses de certains pseudo-bulbes. 


L'ORCHIDÉE AU MOYEN AGE. — La plus ancienne mention qui 
soit faite des Orchidées dans les ouvrages du moyen-âge, se ren- 
contre dans un vieux livre allemand, le Kreutterbuch, œuvre de 
Jérome Bock, plus connu sous le nom de Tragus (traduction 
grecque de son nom patronymique). En 1552, ce botaniste 
signalait les curieuses racines et la singulière mimique des fleurs 
de l’Ophrys européen, seule Orchidée qu’il eût vue : « Das 
unterst Theil, dit-il, vergleicht sich einer Horness oder Bremen; 
das oberst sieht gleich einem Vogelin mit seinem Haupt und auf 
gethonen Flügeln(t1). » 

Le jésuite Kircher, dans le second volume de son Mundus 
subterraneus, paru en 1668, donne au sujet de l’origine des 
Orchis des détails fort bizarres : « Les Orchis naissent en terre 
de la force séminale latente des cadavres pourris de certains 
animaux, sinon de la semence même des animaux qui s'unissent 
sur les montagnes et dans les prairies. La preuve de ce fait se 
révèle, ajoute-t-il, dans les fleurs de ces plantes qui représentent 
l’image de l’animal dont elles sont nées de la semence pourrie 
dans la terre, ou de l’insecte qui naît ordinairement de la pourri- 
ture du cadavre d’un animal. » Cette légende d’origine européenne 
est loin d'avoir la poésie de la légende orientale. 

Les précurseurs de la science moderne : Caesalpin, Fuchs, 
Dodoens, de Lobel(2), de l’Écluse, Dalechamps, Jean et 
Gaspard Bauhin, Robert Morrison ne s’occupent que des 
Ophrys. A leurs yeux, il est vrai, les tubercules didymes de ces 
plantes avaient une étrange vertu, déjà attestée par Pline et 
Dioscoride. Ils préservaient ceux qui en mangeaient, de voir, 


(1) La partie inférieure rappelle une guèpe ou un bourdon; la partie 
supérieure ressemble à un oiseau avec sa tête et ses ailes écartées. 
(2) de Lobel appelle Calceolus Mariaë, Pantouffle de la Vierge, le Cypripe- 


dium Calceolus. 


er 
comme disait Victor Hugo, la maison sans enfants. Aux yeux du 
grand botaniste suédois Linné, telle était même la seule vertu 
de la famille orchidéenne : « Orchideæ sunt aphrodisiacæ, dit-il 
dans sa Philosophie botanique. Aphrodisiaca inter primaria sunt 
Vanilla americanorum, Saleh orientalum, Satyrion europaeorum. » 
La science médicale moderne n’accepte plus dans son intégrité 
le jugement du botaniste suédois. 


PREMIÈRES ORCHIDÉES EXOTIQUES CONNUES. — Les premières 
Orchidées extra-européennes dont il ait été fait mention, 
nous vinrent du Mexique, puis du Cap de Bonne-Espérance. 
Hernandez parle, en 1615(1), du Laelia majalis, que Humboldt 
retrouvait, au commencement de ce siècle, dans les montagnes 
s’étendant entre Acapulco et Playas de Coyuca. Il donna, dans 
un autre ouvrage (2), la figure d’un Séanhopea (S. tigrina Bat.?). 
Elle devint la célèbre fleur de Lynx, qui figure dans les armoi- 
ries de l’Académie romaine des Lyncéens et, dès cette époque, 
servit de motif ornemental dans maints dessins décoratifs. 
Jean Ray, en 1688, consacre, dans son Histoire des plantes, 
cette phrase laconique au Disa grandiflora, la plus belle des 
Orchidées du Cap : « Orchis africain, fleur singulière, her- 
bacée. » Dans son magnifique ouvrage Exoticorum libri decem, 
de l'Écluse, l’homme le plus instruit de son temps, d’après 
Cuvier;, ne prête quelque attention qu’à l’Orchis et à la Vanille. 
van Rheede tot Drakenstein, Sloane, Plumier accordent à peine 
quelques lignes aux Orchidées. 

Linné, dans le Species Plantarum de 1753 qui présente un 
tableau complet de toutes les plantes connues, mentionne 
seize Orchidées tropicales : trois Orchis et treize Epiden- 
drum (3). Dans la seconde édition (1763), il en décrit 99. Miller 


(1) Quatro libros de la Naturaleza de la Plantas y Animales de Nueva España. 
Mexico, 1615. 

(2) Rerum medicarum Novae Hispaniae thesaurus, p. 266. 

(3) Un des disciples les plus éminents de Linné ignorait à ce point 
l'existence des Orchidées épiphytes qu’en découvrant vers 1775, l'Angræcum 
falcatum aux environs du port de Nangasaki, Thunberg en fit d'abord un 
Orchis, puis le rapporta aux Limodorum, ce genre monotype dont on trouve 
de nombreux spécimens autour de la Méditerranée ! 


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n'en mentionnait aucune dans la première édition (1731) de 
son Dictionnary of Gardening; dans la huitième édition (1768), 
il déclare connaître environ trente espèces d'Épidendres « origi- 
« naires de l'Afrique et des deux Indes où elles croissent natu- 
« rellement sur les arbres; mais, ajoute-t-il, comme ces plantes 
« ne peuvent par aucun procédé connu être cultivées dans la 
« terre, il serait de peu d'utilité de les énumérer ici. » 


PREMIÈRES INTRODUCTIONS D'ORCHIDÉES. — Les premières 
Orchidées tropicales introduites vivantes en Europe, furent 
apportées en 1780 par le docteur John Fothergill(x). C’étaient 
le Limoderum Tankervilliae Ait. (Phajus grandifolius Lour.) et 
le Cymbidium ensifolium Sw. 

Les auteurs anglais signalèrent la floraison à Kew, en 1787, 
de l’Epidendrum ciliare et, en 1788, de l’Epidendrum fragrans, 
les deux seules espèces d’Orchidées que contienne la pre- 
mière édition de l’Hortus Kewensis d'Aiton. En 1793, l’amiral 
Bligh introduisit l’Epidendrum nutans et l'Oncidium altissi- 
mum Sw.; en 1795, nous trouvons dans le Catalogue de Kew 
15 Épidendres tropicaux; en 1796 fleurit à Kensington le Cym- 
bidium aloifolium, et en 1800 à Kew, l'Aerides odoratum, intro- 
duit de la Cochinchine. 

Ce furent principalement des officiers de marine ou des capi- 
taines de navire qui apportèrent à la fin du siècle dernier des 
Orchidées tropicales en Angleterre. L’importation de ces 
plantes se ralentit naturellement et cessa même complètement 
au moment des guerres du premier Empire : les officiers avaient 
d’autres préoccupations que celle d'introduire des fleurs. On 
comprend que les premières Orchidées introduites fussent origi- 
naires de l'Amérique du Sud, et principalement de la Jamaïque; 
ces contrées faisaient presque seules à cette époque avec l’Europe 
un commerce régulier. En 1812 apparaissent, importées par 
Roxburgh, les premières Orchidées indiennes, un Vanda(2), un 
Aerides et un Dendrobium. 


(1) Il est probable toutefois que, vers 1765, on vit à Londres un pied vivant 
de Vanilla planifolia. 
(2) Le Vanda Roxburghii fleurit pour la première fois en 1819. 


sit à 


y 

Les capitaines de navire et les officiers de marine donnaient 
naturellement peu de renseignements théoriques sur la culture, 
l'habitat et l’aire de dispersion des plantes qu’ils ramenaient. 
Bien au contraire, ils se plaisaient à raconter des histoires 
plus ou moins vraisemblables, que le public admettait d’autant 
plus facilement qu’elles étaient étranges ou merveilleuses. Les 
savants eux-mêmes se laissaient prendre aux séductions de ces 
contes bleus(1) et affublaient ces Orchidées de noms scientifiques, 
dont l'étymologie dénotait leur ignorance des conditions naturelles 
de la vie de ces plantes : qu'il nous suffise de citer Aerides (filles 
de l'air), Dendrobium (de 3e32y, arbre et 845, je vis), Epidendrum 
(ex, sur et 3ey3207, arbre). 

Vers la fin du XVIIIS siècle, dans les voyages d’exploration 
entrepris par des navires de guerre, les savants adjoints aux 
états-majors, en nous faisant connaître des formes nouvelles, 
découvrirent quelques Orchidées. Philibert Commerson accom- 
pagna Bougainville en 1766; Banks, Solander, les deux Forster, 
André Sparmann furent les compagnons de l'illustre navigateur 
James Cook; La Billardière en France et Robert Brown en 
Angleterre décrivirent les Flores de pays nouveaux au com- 
mencement de ce siècle. Ce dernier nous initia à la connais- 
sance des Orchidées de l’Australie(2}. Aubert du Petit-Thouars 
découvrit les admirables Orchidées des îles de France, de la 
Réunion et de Madagascar(3). Toutefois à cette époque, ces 
plantes n’attiraient guère encore l'attention des botanistes. 
Nous en citerons cette preuve remarquable : dans le voyage 


*(1) Loureiro, missionnaire portugais et botaniste distingué, écrit en 1790, à 
propos de l’Aerides odoratum : « La propriété de cette plante admirable est que, 
« quittant le séjour des forêts et librement suspendue dans l’air, sans aucune 
« nourriture ni base soit terrestre, soit aqueuse, elle vit, croît, fleurit et fruc- 
« tifie pendant plusieurs années. Je ne l’eus pas cru si une expérience long- 
« temps continuée ne me l’eut prouvé. » Pauvre plante! 

En 1812, MM. Loddiges, publiant le premier catalogue des Orchidées 
cultivées dans leurs serres de Hackney (Angleterre), déclarent « avoir reçu 
« l’'Oncidium ensifolium, d’un voyageur revenant de Montevideo et ayant vu 
« fleurir cette plante, dépourvue de toute terre et suspendue, pendant toute la 
« traversée, dans la cabine qu'il occupait à bord. » 

(2) Botany of terra australis. Miscell. Works, I, 48. 

(3) Histoire particulière des plantes orchidies recueillies sur les trois îles 
australes de l'Afrique. Paris, 1828. 


ne 


célèbre entrepris autour du monde par la corvette La Bonite, 
sous le commandement de Vaillant, voyage si fécond en grandes 
découvertes, une seule Orchidée, l’Anaectochilus TFaubertii, 
trouva place dans l’album de l’Expédition. Les botanistes au 
service de la Compagnie néerlandaise des Indes orientales, 
comme le suédois Thunberg par exemple, étudiaient plus cons- 
ciencieusement les plantes de leurs districts. C’est ainsi que 
Rumphius, dans son Herbarium Amboinense, décrivit dès 1750, 
l’admirable Phalaenopsis amabilis, sous le nom d’Angraecum album 
maqus. 

De 1823 à 1825, M. David Lockhart expédia de la Trinité en 
Angleterre les premiers pieds de Sianhopea insignis, d'Oncidium 
Papilio, de Catasetum tridentatum. La floraison de ces Orchidées 
si curieuses vint appeler sur ce genre l’attention d’un public, 
jusqu’à cette époque indifférent au point que le Botanical Maga- 
zine, ce recueil considérable consacré à la description des 
plantes, commencé par Curtis en 1787, ne contient dans ses 
vingt premières années, sur 1013 iconographies, que huit 
planches consacrées aux Orchidées. 


LEs ORCHIDÉES ET LES BOTANISTES MODERNES. — À partir 
de 1815, les Orchidées commencent à attirer l’attention des 
botanistes d'une manière plus spéciale. Un des successeurs 
les plus immédiats de Linné, le botaniste suédois Oloff Swartz 
consacra le premier une étude spéciale (1) aux Orchidées. Dans 
un voyage d'exploration aux Antilles, il découvrit à lui seul 
plus d'Orchidées vivantes que tous ses prédécesseurs réunis. On 
lui doit la connaissance de cinquante-deux espèces nouvelles. 
Louis-Claude Richard, en 1817, bien que n'étudiant que les 
Orchidées européennes, trouve une série de mots nouveaux, 
parfois fort heureux, pour désigner plus clairement les organes 
étranges et bizarres de ces plantes(2). Allan Cunningham intro- 


(x) Stockholm. Academ. Handluger, 1800, et in SCHRADER, Neues Fournal, 1805. 
M. Cogniaux m'a montré un rarissime exemplaire d’une édition anglaise 
publiée aussi en 1805. 

(2) De Orchideis europasis annotationes. Paris, 1817. 


duit et décrit en 1823 les premières Orchidées australiennes. 
Blume, après avoir séjourné longtemps dans les Indes néerlan- 
daises où il dirigea l’admirable Jardin botanique de Buitenzorg, 
publia, en 1825, les premiers résultats de ses recherches dans 
ses Bijdragen tot de Flora van Nederlandsch Indië et ses Tabellen 
en platen voor de Favaansche Orchideën. 

Un botaniste allemand établi à Paris, Kunth, décrit et figure 
dans le premier volume du Nova Genera et Species plantarum de 
Humboldt et Bonpland, les nombreuses Orchidées recueillies 
par les deux célèbres explorateurs. 

La Llave et Lexarza, en 1825, nous font connaître plusieurs 
Orchidées mexicaines dans leur ouvrage : Novarum vegetabilium 
(Mexican.) descriptioli); Kuhl et Van Hasselt récoltent en 1827 
de magnifiques Orchidées dans l’île de Java. Elles sont décrites 
par le professeur Breda(2). À la même époque, l’Université de 
Gand couronne un travail plein d’aperçus nouveaux de Charles 
Morren sur l'Orchis latifolia (3). En 1828, Achille Richard (4) 
étudie avec soin les Orchidées des îles Mascareignes, plus tard 
celles de la chaîne des Nilgheries (5), et enfin celles du Mexique (6). 
Ces travaux, quelque importants qu’ils fussent, furent éclipsés 
par ceux du botaniste qui, en 1830, jeta les bases sérieuses 
de l’orchidologie moderne : Lindley! 


Professeur à l’Université de Londres, Lindley publia de 1830 
à 1840 son admirable ouvrage « Genera and species of Orchidaceous 
plants ». Se servant des études très intéressantes faites par un 


(1) Fasc. II. Orchidearum opusculum. Mexici, 1825. 

(2) BREDA. Genera et species Orchidearum quas in Yava collegerunt Kuhl 
et Van Hasselt, 1827. 

(3) CH. MorREN. Description botanique et anatomique de l'Orchis latifolsa. 
Gand, 1830, 

(4) Acuizze RicHARD. Monographie des Orchidées des îles de France et de 
Bourbon. Paris, 1828. 

(5) Monographie des Orchidées recueillies dans la chaîne des Nil-Gherries par 
M. Perottet. Paris, 1841. 

(6) RicHarD et GALEOTTI. Orchidographia mexicana, in Ann. Sc. nat., 3, III, 
1845. 


TO — 


peintre autrichien établi à Londres, F. Bauer(1), étudiant avec 
passion les Orchidées sur les exsiccata et sur les plantes vivantes 
qu'il recevait de toutes les parties du monde, Lindley leur 
consacra une série de travaux immortels. Depuis 1826, date de 
son premier livre Orchidearum Sceletos, jusqu’en 1865, année de 
sa mort, il ne cessa de publier des travaux importants qui 
jetèrent la plus vive lumière sur les caractères scientifiques et 
les conditions biologiques de ses plantes favorites. Délimitant les 
caractères de chaque groupe, Lindley jeta les bases de la pre- 
mière classification rigoureuse. Dès 1830, il appelait l’attention 
des membres de la Société royale de botanique de Londres, 
sur la nécessité absolue de se préoccuper des lois climatériques 
de l'habitat dans la culture des plantes Orchidéennes. 

Grâce à Lindley, l'élan était donné et ne devait plus s’arrèter. 
La passion des Orchidées entraînait chaque jour de nouveaux 
adeptes. En 1836, un des plus illustres protecteurs de la science, 
le Duc de Devonshire charge un botaniste anglais, M. Gibson, 
d’une mission aux Indes orientales et dote nos serres du 
charmant Dendrobium thyrsifolium. De 1837 à 1843, J. Bateman 
étudie avec le plus vif succès les Orchidées du Mexique et du 
Guatémala(2); Pôppig et Endlicher, celles du Chili, du Pérou 
et du bassin de l’Amazone(3); Wallich, celles de l'Asie orien- 
tale(4); R. Wight (5), celles des Indes orientales, etc. etc. ; tandis 
que Hooker qui dirigeait, avec tant de talent, le Botanical Maga- 
zine, réunit cent des plus belles Orchidées qu'il y avait décrites 
en un volume publié en 1846 (6), exemple que suivit J. Bateman 
en 1867 en publiant une seconde série de cent plantes orchi- 
déennes dont les portraits avaient paru dans le même recueil (7). 

La morphologie et la biologie des Orchidées n’attirèrent 
l'attention des botanistes qu’un peu plus tardivement. 


(x) Ce peintre, observateur très perspicace, publia un ouvrage fort remar- 
quable : Zllustrations of Orchidaceous plants, 1830-1838. 

(2) J. BATEMAN. Orchidaceae of Mexico and Guatemala, 1837-1843. 

(3) PoePpiG et ENDLICHER. Nova Genera ac shecies Plantarum, 1835-1845. 

(4) WazLicx. Plantae asiaticae rariores, 1830-1832. 

(3) R. Wicur. Zcones plantarum Indiac orientalis, 1840-1856. 

(6) À century of Orchidaceous plants. 

(7) À second century of Orchidaceous plants. 


En 1833, nous avons à signaler les premiers travaux de 
R. Brown (1). Après lui vint Lindley, dont les principales œuvres 
furent : Sertum Orchidaceum, 1838. — À century of new genera 
and species of Orchidaceae, 1842-1845. — Orchideae Lindenianae, 
1846. — Folia Orchidacea, 1852-1859. — Contributions to the 
Orchidology of India, in Journ. Linn. Soc., I, III, 1857-1850. 

Presque en même temps que les premiers essais de Lindley, 


A 


Martel publiait à Strasbourg deux parties d'un important : 
mémoire (2) contenant les premières belles planches d'analyse 
d’Orchidées. 

A dater de 1850, nous voyons apparaître les nombreux tra- 
vaux qui illustrèrent les noms de H. G. Reichenbach(3), Th. 
Irmirsch (4), J. G. Beer(s), C. Oudemans (6), H. Leitgeb (7), 
Th. Wolff (8), Môbius(9), A. W. Eichler(10), E. Pfitzer (11) en 


(1) Observations of the organs and mode of fecondation of Orchideae. Transac- 
tions of Linnean Society, XVI, 1833. 

(2) Mémoire sur plusieurs Orchidées nouvelles ou peu connues, avec des obser- 
vations sur les caractères génériques, 1840-1842. 

(3) Orchidiographische Beiträge, 5 parties, Linnasa, 1846, 1847, 1840, 1854, 
1857. — Orchideae per annos 1846-1855 descriptae, in Walpers Annales I, III, VI, 
1848-1864. — Die Orchideen der deutschen Flora, des übrigen Europa, Russlands 
und Algiers, 1851. — De pollinis Orchidearum genesi ac structura et de Orchideis 
in artem ac systema redigendis, 1852. — Garten Orchideen in Bot. Zeitung, 1852- 
1857. — Beiträge zur Orchideenkunde Central Amerikas, 1866. — New Garden 
Orchids in Gardeners Chronicle, 1869-1888. — Beiträge zur Orchideenkunde, 
N. À. Ac. Leop. Car. XXXV, 1870. — Otia botanica Hamburgensia, 1871-1881. 
— Beiträge zur systematischen Pflanzenkunde, 1871. — ÆEnumeration of the 
Orchids collected by Parish in the neighbourhood of Moulmein, 1874. — Xenia 
orchidacea. Leipzig, 1854-1883. — Refugium botanicum (avec Saunders), 1871- 
1882. 

(4) Beiträge zur Biologie und Morphologie der Orchideen, 1853. 

(5) Betträge zur Morphologie und Biologie der Familie der Orcluideen, 1863 
(vol. in-fol., 13 pl. col.). 

(6) Uber die Luftwurzeln der Orchideen, 1861. 

(7) Même titre, Mémoires de l’Académie de Vienne, 1864. 

(8) Beiträge zur Entwicklungsgeschichte der Orchideenblüte, in Pringsh. Fahrb. 
IV, 1866. 

(9) Anatomie der Orchideen-Laubb. in Pringsh. Fahrb. XVIII, 1887. 

(10) Blutendiagramme, 1, 1875, S. 170. 

(11) Beobachtungen über Bau und Entwicklung der Orchideen, 1877-1887. — 
Grundzüge einer vergleichenden Morphologie der Orchideen, 1882. — Morpholo- 
gische Studien über die Orchideenblüthe, 1886. — Entwurf einer natürlichen 
Anordung der Orchideen, 1887. — Untersuchungen über Bau und Entwicklung 
der Orchideenblüte, 1888. — Orchidaceae dans l'ouvrage : Die natürliche Pflan- 
zenfamilien de A. ENGLER et K. PRANTL. Leipzig, 1888. 


Allemagne; Prillieux(), Rivière(2), M. R. Gerard (3), Vesque (4) 
en France; M. Treub(s) aux Indes néerlandaises; et, primus 
inter pares, l’immortel Darwin (6), Bentham (7), Rolfe(8), etc., 
en Angleterre; Éd. Morren(9) et Cogniaux (10) en Belgique. 

Les botanistes descripteurs s’occupèrent d'autant plus assi- 
dûment des Orchidées que l'importation de ces plantes devenait 
plus importante. Le premier travail d'ensemble sur un genre 
orchidacéen à signaler est celui de J. Bateman (11) sur les Odon- 
toglossum, puis viennent les travaux de Godefroid et E. Brown (r2) 
et celui de Kränzlin(13). La monographie la plus récente est 
consacrée aux Masdevallia; on la doit une dame, Miss Florence 
H. Woolward (14). 


(1) Sur la déhiscence du fruit des Orchidées, 1859, en collaboration avec 
RIVIÈRE. 

(2) Observations sur la germination d'une Orchidée. Ann. sc. nat., IVe série, 
t. V, 1856. 

(3) Sur l’homologie et le diagramme des Orchidées. Ann. sc. nat. VIII, 1878. 
— La fleur et le diagramme des Orchidées. Thèse in-4°, 1870. 

(4) Traité de Botanique agricole et industrielle, in-8°. Paris, 1885. — De 
l'Anatomie des tissus appliquée à la classification des Plantes nouvelles. Archives 
du Muséum de Paris, 2me série, T. IV, p. 1 et deuxième mémoire, p. 291. 
Paris, 1881. — L'Espèce végétale considérée au point de vue de l’Anaiomie com- 
parée. Annales des Sciences naturelles. Botanique, 6me série, T. XIII. — Sur les 
causes et les limites de la variation de structure des végétaux. Annales agrono- 
miques, T.IX.— Epharmosis sive materiae ad instruendam anatomiam systematis 
naturalis. Paris, 1889-1893. Dans le premier de ces ouvrages, VESQUE expose 
les caractères généraux des Orchidées; il se borne à étudier les genres Orchis 
et Vanilla. Les autres travaux ont une portée plus générale et, sans se rap- 
porter spécialement aux Orchidées, nombre d'idées exposées dans ce livre ont 
leur origine dans les travaux généraux de VESQUE. 

(5) Embryogénie de quelques Orchidées. — Quelques recherches sur le rôle du 
noyau dans la division des cellules végétales. Amsterdam, 1870. 

(6) Fertilisation of Orchids, 1862. Traduit en plusieurs langues. 

(7) Notes on Orchideae. Fourn. Linn. Soc. XVIII, 1881; le chapitre Orchidene 
dans le Genera de BENTH. et Hooker, et Flora australiensis, vol. VI, 1876. 

(8) On the sexual forms of Catasetum. Fourn. Lin. Soc. XXVII, 1889 et pas- 
sim in Gardeners Chronicle, Lindenia, Reichenbachia et le Bulletin de Kew. 

(9) La Belgique Horticole (passim). 

(10) Les Orchidées du Brésil dans la Flora brasiliensis de MARTIUS et passim 
dans le Yournal des Orchidées. 

(11) Monography of Odontoglossum, 1864-1874. 

(12) Les Cypripediées, par Goperroip et E. BrRowN, 1880. 

(13) KRANZLIN. Beitrüge zu einer Monographie der Gattung Habenaria, in 
Engler, Bot. Fahrb., XVI, 1892. 

(14) The genus Masdevallia. Plates and description by Miss Florence H. 
Woolward. Porter. London, 1890-1893. 


Dans les Flores publiées depuis 1860, — et elles sont nom- 
breuses —1a famille orchidacéenne tient une place sans cesse plus 
considérable. Au premier rang de celles-ci, il faut citer la belle 
monographie des Orchidées de l'Inde, que le Docteur J. D. 
Hooker vient d’achever dans un admirable recueil : The Flora of 
british India; dans cette étude, les nouvelles espèces et les noms 
nouveaux se comptent par centaines. Lindley, R. Brown, Reiï- 
chenbach et dans ces derniers temps Rolfe sont les botanistes 
dont les initiales se rencontrent le plus souvent après le nom 
scientifique d'Orchidées dont ils ont été les parrains. W. Grif- 
fith (1), J. D. Hooker (2), W. H. De Vriese (3), T. Moore (4), 
L. C. Blume(s5), D. Fitzgerald (6), J. Barbosa Rodrigues (7), 
H. Bolus(8), Ridley (9), R. Warner(10), et bien d’autres publièrent 
dans ces dernières années d'’intéressants travaux descriptifs. 
Les Orchidées d'Europe, malgré leur insignifiance, eurent leur 
part de gloire : Reichenbach{(r1), A. Todaro(12), J. B. Barla(13), 
Estacio da Veiga(14), A. D. Webster(15), Max Schulze(16) leur 


(1) Icones plantarum asiaticarum, III, 1851. 

(2) Flora of New Zealand, 1852-55. — Flora Tasmaniae, 1860. — Flora of 
british India, V et VI, 1890-1891. — Icones plantarum, vol. XXI (Indian 
Orchidaceas) 1890-1802. 

(3) Illustrations d'Orchid£es dss Indes orientales, 1854. 

(4) Illustrations of Orchidacsous plants, 1857. 

(5) Orchideac. Flora Favas, n, ser., I, 1858. 

(6) Australian Orchids, 1876-88. 

(7) Gencra et speciss Orchidearum novarum, 1877 et 1881. 

(8) The Orchids of the Cape peninsula, avec 36 pl., 1888. — Icones Orchs- 
dearum Austro-A fricanarum extra-tropicarum, vol. I, 1893. — Note on some Cap 
Orchids, in The Fournal of the Linnean Society, XIX (1882). — Contributions to 
South African Botany (Orchideae) id. id., XX (1884) et XXII (1885). — À revi- 
sed List of Orchids of south extra-tropical Africa. 7. Linn, Soc., XXV (1889). 

(9) Orchids of Madagascar (1885). — On D. Fox's collection of Orchids from 


Madagascar (1886). — À monograph of the genus Liparis. — À revision of the 
genera Microstylis and Malaxis. — On the contrivances for insuring self-fertili- 
sation in some tropical Orchids, etc. — Notes on self-fertilisafson and cleistogamy 


in Orchids, Fourn. Linn. Soc. Lond. 

(10) Select Orchidaceous Plants, 3 vol. in-fol. avec planches. 

(x1) Icones Floras germanicae et helveticae, vol. XIII et XIV, Orchideae, 1851. 

(12) A. Toparo, Orchideae Siculae, 1842. 

(13) J. B. BaRLA. Iconographie des Orchidées de la Flore de Nice et des Alpes 
Maritimes, 1868. 

(14) Esrtacio DA VeiGa. Orchideas de Portugal, 1886. 

(15) A. D. WessTER, British Orchids, 1887. 

(16) Max Scauzze. Die Orchidaceen Deutschlands, Oesterreiche und der 
Schweiz, 1892-1893. 


consacrèrent d'intéressants travaux. Celles des États-Unis trou- 
vèrent leur historien dans H. Baldwin(1). 


LES VULGARISATEURS. — La culture des Orchidées fut, elle 
aussi, l’objet des travaux de spécialistes. De 1845 à 1860, cinq 
ouvrages paraissent : celui de M. Henshall est le premier en 
date (2), puis vinrent ceux de Lyon(3), de F. Josst(4), de Beer (5), 
de Morel(6). Ces traités pratiques ne sont aujourd’hui curieux 
qu'au seul point de vue historique. 

Depuis vingt ans surtout, la culture des Orchidées a subi de 
notables perfectionnements et les journaux horticoles tiennent 
mensuellement ou hebdomadairement leurs lecteurs au courant 
des réformes accomplies et des progrès réalisés. Il n’est guère de 
fascicule du Botanical Magazine qui ne contienne la diagnose, 
la culture et la description d’une Orchidée nouvelle. Consultez 
la Revue horticole de Paris, la Revue de l'horticulture belge et 
étrangère de Gand, l'Illustration horticole de Bruxelles, le Garten- 
flora publié en Allemagne par Wittmack, l’Ilustrirte Garten 
Zeitung de Vienne, le Gardener’s Chronicle, ce Times de l’hor- 
ticulture universelle, et ces innombrables journaux horticoles 
de l'Angleterre, de la France, de la Belgique, de l’Allemagne 
et de l'Amérique, vous serez frappé de voir avec quelle intensité 
s’accumulent les descriptions, les observations, les procédés 
ayant pour sujet les Orchidées ou leur culture (7). 

De plus, dans toutes les parties du monde, apparaissent de 
nouveaux ouvrages spéciaux. Au premier rang de ceux-ci, nous 
devons citer l’excellent travail du comte du Buysson: non-seule- 
ment, l'Orchidophile — tel est son titre — fut le premier traité 


(1) H. Bazwin. The Orchids of New England. New-York, 1884. 

(2) Practical treatise of the cultivation of Orchidaceous plants. Londres, 1845. 
(Traduit en allemand.) 

(3) Pratical treatise on the management of Orchidaceous Plants, 1845. 

(4) Beschreibung und Kultur tropische Orchideen, 1852. 

(5) Praktische Studien an der Familie der Orchidezn. Vienne, 1854. 

(6) Traité pratique de la culture des Orchidées. Paris, 1854. 

(7) A cette liste des revues actuellement existantes, nous devons ajouter la 
Flore des Serres de Van Houtte et la Belgique horticole de Morren qui ont 
malheureusement cessé de paraître. 


— 15 — 


réellement pratique de la culture des Orchidées, mais il est resté 
le modèle du genre(1). Presque à la même date, parut un petit 
ouvrage, beaucoup moins important de G. Delchevalerie (2). 
F. Britten et W. H. Gower (3), F. W. Burbidge (4), Lewis 
Castle(5), Desbois (6), S. Jennings(7), D. Bois(8), écrivirent des 
ouvrages pratiques, plus ou moins scientifiques, dont plusieurs 
furent traduits en d’autres langues. 

En 1880, un charmant écrivain belge, de Puydt, publia un 
remarquable travail de vulgarisation sur les Orchidées(9) : sa 
science aimable se plut à décrire dans une forme très littéraire 
les principaux groupes d’Orchidées. En Angleterre, nous avons 
vu paraître dans ces vingt-cinq dernières années les traités 
rapidement populaires de Burbidge (10), de T. Appleby(11), de 
Williams (12), de Watson et Bean (13), surtout et par dessus tout, 
les excellentes monographies publiées par la maison Veitch de 
Chelsea (14). En Allemagne, Stein a publié récemment un ouvrage 
très clair et très pratique (15). En Suisse, nous avons à citer les 
travaux si complets de Henry Correvon (16). En Amérique, H.S. 
Milner a publié, en 1885, un intéressant ouvrage(17). Des jour- 
naux spéciaux ont été et sont consacrés aux Orchidées : en 
Belgique, le Ÿournal des Orchidées de M. Linden; en France, 
l'excellent Orchidophile de M. Godefroy-Lebœuf. A côté de ces 


(1) L'Orchidophile.—T raité théorique et pratique sur la culture des Orchidées, 
par le comte François DU Buysson. Paris, 1878. 

(2) Les Orchidées : culture, propagation, nomenclature. Paris, 1878. 

(3) Orchids for amateurs. London, 1878, in-80. 

(4) Cool Orchids and how to grow them (traduit en allemand). 

(5) Orchids : structure, history and culture, 188€ (traduit en français). 

(6) Monographie des Cypripedium, des Selenipedium et Uropedium. Gand, 1888. 

(7) Orchids and how to grow them in India and other tropical countries. 
London, 1875. 

(8) D. Bois. Les Orchidées. Paris, J. Baillière et fils. 

(9) Les Orchidées. Histoire iconographique. Rothschild, Paris, 1880. 

(10) Temperate Orchids, 1874. 

(11) Orchid Manual, 2e édit., 1365. 

(12) The Orchids growers Manual, 1874-1885. 

(13) Orchids : Their culture and management with descriptions of all the kinds 
in general cultivation, 1890. 

(14) À Manual of Orchidaceous plants cultivated under glass, 1887-1893. 

(15) Orchideenbuch. Berlin, 1892. 

(16) Les Orchidées rustiques. Genève, 1893. — Les plantes des Alpes, 1885. 

(17) Illustrations of the royal Family of plants. New-York, 1885. 


TO — 


journaux populaires, que de luxueuses publications n’avons nous 
pas à citer, consacrées à la seule glorification des Orchidées ! 
Ornées de chromolithographies exécutées avec un art infini et une 
science sérieuse, ces publications forment un ensemble admirable 
et supérieur, de l’avis unanime des botanistes, à celui des travaux 
consacrés à toute autre famille végétale. La Pescatorea publiée 
en 1860 par Linden, Planchon, Luddemann et Reichenbach; la 
Lindenia, commencée en 1884 par M. Linden et publiée sans 
interruption jusqu’aujourdhui; la ÆReichenbachia, l'important 
ouvrage édité par la maison Sander de S‘ Albans depuis 1885; 
l'Orchid Album, publié par la maison Williams de Londres, 
brillent certes au premier rang des plus beaux travaux icono- 
graphiques consacrés à une famille végétale. 


LES BOTANISTES VOYAGEURS ET LES IMPORTATIONS. — À côté 
de ces écrivains et de ces publicistes qui ont si bien mérité 
de l’Orchidologie, nous nous reprocherions de ne pas citer 
le nom des plus illustres collecteurs qui ont, parfois au 
péril de leur vie, importé dans nos serres les plus brillantes 
fleurs des tropiques. Éd. André, Bateman, Bidwill, Bowman, 
Boxall, Bruchmuller, Bungeroth, Chesterton, Cuming, Curtis, 
Deronne, Descourtilz, De Vos, Ellis, Endres, Freeman, Fortune, 
Galeotti, Gardner, Gibson, Ghiesbreght, W. Griffith, Hartwepg, 
].D. Hooker, Houllet, Léon Humblot, Hutton, Jacquin, Jameson, 
les frères Klaboch, Korthals, Kramer, Libon, Jean Linden, 
Thomas Lobb, William Lobb, Mottley, Oersted, C. Parish, 
Pearce, Poeppig, Marius Porte, Purdie, Reeves, Roezl, Ross, 
Roxburgh, John Russell, Schlim, Simons, Ure Skinner, Spruce, 
Teysman, Peter Veitch, John Gould Veitch, Wagner, D' Wallich, 
G. Wallis, Warscewicz, Zahn, etc. méritent de voir leurs noms 
rappelés au souvenir de tous les orchidophiles. Les uns, comme 
Jean Linden, après avoir été les premiers et les plus heureux 
explorateurs de ce siècle, se sont faits à leur retour en Europe 
les plus vaillants vulgarisateurs de la culture rationnelle de ces 
plantes; les autres, et c’est le plus grand nombre, ont été frappés 
mortellement au cours de leurs périlleuses explorations. Empoi- 
sonnés par les miasmes meurtriers de l'Asie, brisés par les fièvres 
contractées dans les marais pestilentiels de l’Afrique ou sur les 


DE 


bords fangeux des rivières américaines (1), ils sont morts avant de 
pouvoir jouir de la gloire qui leur revenait et sans entendre le 
doux murmure des foules admirant leurs brillantes introductions. 

Parfois le hasard, ce pouvoir mystérieux auquel les Grecs 
eussent élevé des autels, se charge d'introduire dans nos serres 
sur un tronc importé, dans des débris végétaux, une Orchidée 
échappée par miracle au racloir de l'ouvrier indigène. C'est ainsi 
qu’au commencement du siècle, Piérard envoyant de Birmanie 
des rameaux du Lagerstræmia Reginae, dota à son insu nos 
serres du merveilleux Dendrobium aggregatum. 


DESIDERATA. — Quelque grand que soit le nombre des espèces 
cultivées ou décrites, nous ne pouvons nous flatter de connaître 
toutes les Orchidées répandues sur la surface du globe. L’Amé- 
rique, l’Asie, l'Australie, l’Afrique renferment de vastes terri- 
toires inexplorés. En Europe même, la Russie et la Grèce offrent 
encore aux botanistes des provinces dont la Flore n'est guère 
connue. Quelles merveilles ne doivent pas renfermer ces terres 
éparses dans le grand Océan pacifique, ces milliers d’attols, 
ces îles en cônes ou en anneaux qui semblent appartenir soit 
à un continent submergé, soit à un nouveau monde en voie 
de formation. Qui nous révélera les trésors croissant sur les 
< tanah », les « poulo », les « nousa » perdus dans cette mer 
immense qui s'étend de Sumatra à Tenimber, de Lombok à la 
pointe septentrionale de Bornéo ? Quand serons-nous en posses- 
sion de ces Orchidées entrevues par Stanley dans les forêts de 
l'Itouri et sur les pentes du Ruwenzori < reposant leurs fleurs 
sur le coussin délicat des mousses au vert intense, tandis qu’à 
chaque feuille brillait suspendue une claire et pure gouttelette ? > 
Quand l’homme connaîtra-t-il toutes les plantes renfermées dans 
les forêts du Brésil et de la Guyane, sur les pentes et dans les 
ravins des Indes asiatiques où l'air, l’eau et la terre sont impré- 
gnés de flammes fécondes et produisent, dans une géhenne 
incessante, la vie se greffant sur la mort, les merveilleuses 
féeries du monde végétal tropical? 


(x) Les îles de la mer du Sud, le littoral du golfe du Mexique, l'Inde, l'Afrique 
tropicale ont été les pays les plus meurtriers. 
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PREMIÈRE PARTIE. 


L'ORCHIDÉE, SA STRUCTURE ET SON 
ORGANISATION (). 


GHAPIERE. TL. 


DÉFINITION DES ORCHIDÉES. — LEURS RAPPORTS 
AVEC LES AUTRES MONOCOTYLÉDONES — 
DIAGNOSE DES ORCHIDÉES. 


I. LA FLEUR TYPE DES MONOCOTYLÉDONES. — Les caractères 
les plus saillants des Orchidées, ceux qui définissent ce groupe, 
sont tirés de leur fleur. Pour apprécier exactement ces caracté- 
ristiques, nous sommes obligés de rappeler d’abord le type 
général de l’organisation des Monocotylédones. 

Chez les Monocotylédones, l’organisation de la fleur se ramène 
toujours au dispositif suivant : 

a) L'enveloppe florale ou périanthe présente six pièces disposées 


(1) Pour la rédaction de cette Première Partie, j’ai largement mis à contri- 
bution: 1° la belle étude sur les Orchidées que le savant professeur E. Pfitzer 
de Heidelberg a publiée dans Die naturlichen Pflanzenfamilien de ENGLER 
et PRANTL; 2° les notes fort complètes des leçons sur les Monocotylédones 
que mon excellent ami C. Eg. Bertrand a professées à la Faculté des Sciences 
de Lille en 1892-93 et qu'il a bien voulu mettre de la manière la plus gra- 
cieuse à ma disposition. 


sur deux rangs concentriques, l’un externe, l’autre interne. 
Chacun de ces rangs contient trois pièces. Les pièces internes 
alternent avec les pièces externes, c’est-à-dire qu'elles sont 
placées devant l'intervalle qui sépare deux des pièces externes. 
La disposition des pièces du périanthe sur deux rangs est plus 
importante que le nombre de ces pièces. Ainsi, au lieu de six 
pièces au périanthe, on peut en trouver quatre; même dans ce 
cas, elles sont placées sur deux rangs : deux étant externes et 
deux internes placées en croix avec les premières. La disposition 
des pièces du périanthe sur une hélice de cycle 2/; (ou sur quelque 
autre hélice analogue) — qui serait si intéressante pour l’appré- 
ciation de la nature des pièces de ce périanthe — n'est pas 
représentée. 

b) Les pièces du périanthe des Monocotylédones sont toutes 
de même nature. Chez les plus élevées de ces plantes, on constate 
cependant une tendance des pièces internes à se différencier. 
Elles deviennent plus délicates, plus colorées, plus grandes que 
les pièces externes : aussi les désigne-t-on quelquefois sous le 
nom de pétales, les pièces externes étant nommées sépales. Cette 
assimilation complète des deux verticilles du périanthe à la 
corolle et au calice des Dicotylédones n’est pas justifiée. 

c) Intérieurement, la fleur type des Monocotylédones présente 
six étamines superposées aux pièces du périanthe et disposées sur 
deux rangs concentriques : trois externes superposées aux pièces 
dites sépalaires, trois internes alternantes avec celles-ci et super- 
posées aux pièces pétalaires. Cette superposition des étamines 
aux pièces du périanthe est un caractère d’infériorité, ou plutôt 
un caractère primitif que nous ne trouvons développé au même 
degré que chez les Dicotylédones inférieures (Alnées, Morales, 
Polygonales, Chénopodales, Pipéroïdes); mais, tandis que chez 
plusieurs de ces Dicotylédones, les Polygonales, les Chénopo- 
dales, cette superposition des étamines au périanthe frappe 
l'observateur parce qu'il la rencontre dans des fleurs en hélice, 
chez les Monocotylédones, elle est presque toujours masquée 
par l’alternance résultant de la disposition verticillée des pièces 
de l’androcée. Sur les étamines des Monocotylédones, les sacs 
polliniques ou sacs sécréteurs du pollen sont au nombre de 
quatre, groupés en deux paires, placées l’une à droite, l'autre à 


gauche du plan médian de l’étamine, et très généralement à la 
face antérieure de cette étamine. Très souvent aussi, le pollen 
mûr est en grains isolés. 

d) Au centre de la fleur, s’élève l’appareil femelle ou pistil, 
formé de trois carpelles superposés aux pièces externes du 
périanthe. Ces carpelles sont fermés par le rapprochement de 
leurs bords sur leur face interne. Ils sont ordinairement coales- 
cents entre eux par la face qui regarde le centre de la fleur : 
d’où, un ovaire en apparence unique, à trois loges dans sa partie 
inférieure. La fermeture des carpelles s'étend habituellement 
jusqu'au haut de l’ovaire, à la base de la colonne stylaire. La con- 
crescence ou adhérence des carpelles entre eux s’étend plus haut, 
jusque dans le style, et parfois même jusqu’au stigmate. Néan- 
moins, le stigmate est souvent trilobé. 

e) Les ovules ou glandes femelles 
sont localisés dans l’angle interne des 
loges ovariennes. Ils sont insérés sur 
deux cordons parallèles ou placentas. 
Ces ovules ont deux téguments autour 
de leur nucelle. Par suite d’un dévelop- 
pement unilatéral, l’embouchure de 
l'ovule ou micropyle reste contiguë à 
sa base ou ile, l’ovule est renversé 
ou anairope. 

Selon la Monocotylédone, les pièces 
du périanthe sont insérées sous l’ovaire 
qui se trouve ainsi libre et supère par 


rapport à elles, ou bien elles sont insé- 


z ] Ê haut l’ = Fig. 1. — Fritillaria imperia- 
rées plus ou moins haut sur l’ovaire, D et 
voire même à la naissance de la colonne moitié de son périanthe. Bien 

: ; e à F que cette fleur ait normale- 
stylaire. L’ovaire paraït alors placé ment son embouchure en 


bas, pour les besoins de la 
comparaison nous l'avons 
rapport au périanthe. On le dit aussi représentée avec l'embou- 
chure du périanthe en haut. 


au-dessous de la fleur; il est snfère par 


adhérent, en supposant qu'il est en 
quelque sorte soudé avec la partie inférieure des pièces du périanthe. 

Nous résumons ces faits dans les figures représentant la coupe 
verticale antéro-postérieure d’une fleur de Fritillaire (fig. 1) 
et celle d’une fleur de Nivéole, Leucoium vernum (fig. 2). 


2 — 


Pour l’une comme pour l'autre, le plan de la fleur ou son 
diagramme — c’est-à-dire le croquis où les pièces de la fleur 
sont représentées dans leurs 
positions relatives (fig. 3 
et 4) — reste le même, 
bien que la Fritillaire ait 
un ovaire libre, supère et 
le Leucoium, un ovaire in- 


fère. 
Fig. 2. — Leucoium vernum, fleur coupée II. CARACTÈRES QUERESS 
verticalement. METTENT DAPPRÉCIER LE 


DEGRÉ D'ÉLÉVATION RELATIVE DES MONOCOTYLÉDONES. — Toutes 
choses égales: Une 
plante dont les 
carpelles sont fer- 
més, est organique- 
ment plus parfaite, 
plus élevée, qu’une 


plante à carpelles 
Du usé ouverts et dont par 


Fig. 3. — Diagramme Fig. 4. — Diagramme du Suite l’ovaire est 
du Fritillaria. Leucoium vernum. uniloculaire ; 
Une plante dont les carpelles sont isolés les uns des autres, 
indépendants, est supérieure à celle dont les carpelles sont 
coalescents ; 

Une plante à ovaire infère est supérieure à une plante à ovaire 
supère. 

Très souvent, l'infère-ovarie qui est un perfectionnement orga- 
nique très important, s’accompagne de faits regressifs indiquant 
un retour vers un état de développement moins avancé : ainsi 
la concrescence des carpelles peut se trouver plus accusée, la 
fermeture des carpelles peut être moins complète, dans une plante 


à ovaire infère, que dans la plante correspondante à ovaire libre. 


III. LA FLEUR DE L'ORCHIDÉE MONANDRE CHEZ L'ORCHIS 
LATIFOLIA, LE PTEROSTYLIS ET LE LYCASTE MACROPHYLLA. — 
Examinons maintenant une fleur d’Orchidée autre que celle 


d’une Cypripédinée. Choisissons par exemple, une fleur d’Orchis 


Fig. 5. — A Orchis maculata L., fleur vue de face; a anthère; b bursicule: 
n lobes stigmatiques; x staminodes; sp éperon; spe entrée de l'éperon; B pol- 
linie au moment de son enlèvement; c pollinie après dessication, rabattue en 
avant; D Himantoglossum hircinum Spr., fleur vue de coté; E Comperia tau- 
rica BL.; Fr Serapias cordigera L. vue de coté; & colonne; H Anacampiis 
byramidalis Rcus., fleur vue de face; 1 pollinarium. 


maculata (fig. 5) de Pterostylis (fig. 6) ou de Lycaste macrophylla 
(g. 7). 

a) L’ovaire est placé tout entier sous le périanthe; il est infère. 

b) Le périanthe montre six pièces dis- 
posées sur deux rangs très rapprochés 
l’un de l’autre. 

Des trois pièces externes, l’antérieure 
est souvent plus grande, on l’a nommée 
casque, sépale médian ou encore sépale 
impair; les pièces latérales sont appelées 
ailes, sépales latéraux ou sépales pairs. 

Des trois pièces internes, les deux anté- 
rieures sont plus petites; on les appelle 


manteau, pétales latéraux ou pétales pairs. 
La pièce postérieure interne, très grande, Fig. 6. — Fleur de Ptero- 
/ 2 E ; stylis. A vue deprofil; Bles 
est nommée Jabelle, pétale impair ou  sépales et pétales enlevés: 
pétale postérieur. Ce labelle nous montre © 8ÿnostème vu de face, 
un éperon bien développé chez l’Orchis. Chez le Lycaste, il 
embrasse l’ensemble des organes reproducteurs et les cache au 
fond d’un entonnoir. Toutes ces pièces sont complètement indé- 


pendantes les unes des autres dans les trois exemples choisis. 


Elles sont insérées tout en haut de l'ovaire, à la naissance du 
style. L'indépendance des pièces du périanthe, leur développe- 
ment relatif sont sujets à de grandes variations; les différences 
en résultant donnent les définitions des genres. 

Tandis que dans le bouton floral le labelle est postérieur, 
dans la fleur développée, par suite d’une torsion de 180o°, le 
labelle devient antérieur. Nous supposerons dans nos descriptions 
que cette torsion n’existe pas et que le labelle est replacé dans 
sa position postérieure. 

c) Au centre de la fleur, s’élève une sorte de grosse tige, 
que les botanistes français appellent indifféremment gynostème 
ou colonne, que les botanistes allemands nomment Saÿle et les 
anglais column; elle porte à la fois les organes mâles et l’embou- 


Fig. 7. — A Xylobium pallidiflorum Prirz.; B et c pollinies; D Lycaste macro- 
bhylla Loz.; E,F pollinarium; @G Paphinia cristata Loz.; x pollinarium. 
chure de l'organe femelle ou stigmate. Presque au sommet 
apparent de la colonne, sur sa face antérieure — c’est à dire du 
côté du sépale impair — est une grosse étamine, couchée sur le 
sommet de la colonne chez le Lycaste, dressée chez le Pterostylis 
et chez l’Orchis. Cette étamine unique correspond à l’étamine 
impaire du verticille externe des autres Monocotylédones. Chez 


| 


PCA 


— 25 — 


les Orchidées, l’étamine développée est énorme et très-longue- 
ment coalescente avec la colonne stylaire. Cette étamine unique 
est le reste d’une phalange staminale réfugiée dans la partie 
antérieure de la fleur et réduite à une étamine concrescente avec 
la colonne stylaire. Cette concrescence des étamines avec la 
colonne stylaire est un caractère peu répandu, surtout poussé au 
degré où nous le voyons ici. 

d) L’unique étamine des Orchidées a quatre sacs polliniques, 
groupés en deux paires, placées l'une à droite du plan médian de 
l’'étamine, l’autre à gauche. Ils sont sur la face interne de l’éta- 
mine, celle qui se couche sur la colonne chez le Lycaste. 

Le pollen ne se présente pas en grains isolés (fig. 8) : il reste 
aggloméré en masses renfermant un grand nombre de grains: 
même quand le pollen paraît granuleux, comme 
chez le Pterostylis, chaque granule contient plu- 
sieurs grains de pollen. Ces masses polliniques 
s'appellent pollinies. Très souvent, comme chez 
l’Orchis, ces masses polliniques se prolongent par Fig.S.—Orchis. 
des filaments gommeux concrétés qui relient la Forion due 

pou] 
pollinie à la masse adhésive chargée de fixer la nique.) 
pollinie à l’être qui en opérera le transport. Ces prolongements 
des pollinies sont les caudicules (fig. 9). 

Les pollinies s’attachent à la masse adhésive 
soit directement, soit par leurs caudicules 
(Orchis), soit par un stylet dont l'origine est autre 
que celle des caudicules (Lycaste). 

e) A la face postérieure de la colonne, du côté 
du labelle par conséquent, couvrant presque 
toute cette face chez l'Orchis, plus localisé et 


— — 


logé assez haut sur cette face chez le Pterostylis Fig.o.—Pollinies, 


7 caudicules et 
et chez le Lycaste, nous trouvons son véritable ie adhésive 


sommet organique. Ce sommet est transformé en d'un Orchis. 

une région collectrice ou stigmate, de configuration variable. 
La plus répandue montre trois parties correspondant aux som- 
mets des trois pièces carpellaires. Le sommet du carpelle médian, 
au lieu d’être un lobe collecteur, est ordinairement dévié de ce 
rôle et transformé en une glande chargée de sécréter la matière 
glutineuse dite masse adhésive dont nous avons déjà parlé. On a 


labre 


donné à l’ensemble du lobe le nom de rostellum. Les deux autres 
lobes stigmatiques, plus ou moins distincts, forment la surface 
gluante ou visqueuse du stigmate et sont véritablement les 
organes collecteurs du pollen. 

Dans les exemples que nous avons choisis (Orchis, Pterostylis, 
Lycaste), le stigmate paraît latéral et postérieur, au lieu d'être 
terminal. Sa partie collectrice est séparée de l’étamine par le 
lobe antérieur ou rostellum. Par suite d’une inégalité de crois- 
sance des deux faces de la colonne stylaire, la face antérieure se 
développant plus que la face postérieure, le sommet de la colonne 
stylaire s'est fortement infléchi en arrière, au point d'amener le 
sommet dans le prolongement de la face postérieure. Cette face 
est d’ailleurs le plus souvent déprimée et concave. 

Chez le Pterostylis et chez l’Orchis, le gynostème porte de 
petites expansions, lamelles ou appendices variés, que l'on 
regarde comme des étamines plus ou moins avortées et trans- 
formées. On nomme ces appendices des séaminodes. 

Chez le Lycaste, la colonne se prolonge à la base de sa région 
postérieure en une sorte de 
lame épaisse, sur laquelle se 
localise parfois l’insertion du 
labelle et des sépales laté- 
raux; il en est de même 
chez le Drymoda picta Ldl., 
curieuse et bizarre Orchidée 
malaisienne (fig. 10). On 
donne à ce prolongement 
inférieur de la colonne, le 
nom de pied de la colonne 
(Saülenfusz) (fig. 10, B, f). 

g) L’ovaire infère est uni- 


Fe uo— Drymoda picta Lor.; A port 
de la plante; B fleur: c colonne; p polli- 
narium; y stélidies ; if pied de la colonne: loculaire. Les placentas sont 

DR placés sur les parties de la 

loge superposées aux pétales; les carpelles sont superposés aux 

sépales. Les placentas sont de grosses bandes toutes chargées 
d'ovules d’une ténuité extrême. Malgré leur exiguité, ces ovules 
sont anatropes et bitégumentés. Ils ne se développent que 


tardivement. 


Ainsi tout en offrant l’organisation générale de la fleur des 
Monocotylédones, les trois Orchidées que nous avons choisies 
comme types, se distinguent par des caractères communs bien 
nets : 

1° Leur infère-ovarie. 

2° Leur périanthe symétrique par rapport à un plan,ou,comme 
on dit, zygomorphe. Le plan de symétrie est ici antéro postérieur. 
Cette symétrie plane est imprimée à la fleur par le grand 
développement de sa pièce pétalaire postérieure et un peu par 
le développement de sa pièce sépalaire antérieure. Les pièces 
latérales ont aussi une tendance à se différencier symétrique- 
ment, à droite et à gauche du plan antéro-postérieur. Les pièces 
internes du périanthe sont plus différenciées que les pièces 
externes. 

3° Un androcée où l’ensemble des étamines est réduit à son 
terme externe antérieur, l’étamine restante devenant énorme et 
adhérente à la colonne stylaire, d'où un gynostème. L’anthère 
introrse est soit couchée, soit dressée sur le sommet apparent du 
gynostème. L’androcée est donc très profondément zygomorphe. 

Le pollen produit par l'unique anthère reste aggloméré en 
pollinies, ou tout au moins en grains composés. 

4 Une colonne stylaire, courbée dans sa partie supérieure au 
point de ramener le stigmate dans le prolongement de son arête 
postérieure. Le lobe antérieur de ce stigmate est adapté à une 
fonction spéciale : la production de la masse adhésive. 

La colonne stylaire et le stigmate sont donc aussi profondé- 
ment zygomorphes. 

5° Un ovaire uniloculaire sur lequel on peut aussi observer 
des traces de zygomorphie, avec placentas pariétaux chargés 
d'ovules d’une extrême ténuité, mais cependant toujours anatropes 
et bitégumentés, à développement tardif. 

Toutes les Orchidées actuellement connues, moins les trois 
genres Cypripedium, Paphiopedium, Selenipedium ont ces mêmes 
caractères fondamentaux. Cette uniformité si absolue des carac- 
tères essentiels rend la répartition des Orchidées monandres en 
tribus et en genres extrêmement difficile puisqu'il ne reste plus 
pour distinguer et définir ces groupes que des caractères de peu 
de valeur, sujets à variation et à répétition, dont la gradation, au 


Lu oe 


point de vue de leur apparition successive dans le temps, laisse 
place à toutes les hypothèses comme à toutes les discussions. 
Aussi, si les grandes divisions des Orchidées monandres sont 
acceptées par tous les botanistes, il n’en est pas de même des 
subdivisions inférieures qui sont très contestées et très con- 
testables. Toutes celles qui ont été proposées jusqu’ici ont une 
allure artificielle : on les emploie parce qu’elles permettent une 
détermination rapide, mais non parce qu'elles représentent les 
rapports réels des genres d’Orchidées. 
Les essais de classification qui ont été 
tentés, sont presque tous devenus de 
véritables clefs dichotomiques très utiles 
sans doute; ce ne sont pas à proprement 
parler des classifications botaniques. 
Diagramme des Orchidées monandres. 


— Nous résumons toutes les indications 
Fig. 11. — Diagramme des que nous avons relevées sur la position 
Orchidées monandres. es pièces de la fleur des Orchidées, 


dans le diagramme (fig. 11), qui sera le diagramme des Orchidées 
monandres. 


IV. DEGRÉ D'ÉLÉVATION ORGANIQUE DES ORCHIDÉES MONAN- 
DRES PARMI LES MONOCOTYLÉDONES. — L'attribution des Orchi- 
dées aux Monocotylédones résulte de la structure générale de 
leur fleur, et aussi de la structure de leur appareil végétatif. Mais, 
dira-t-on, pourquoi cette attribution n'est-elle pas établie, comme 
on le fait toujours, sur l’organisation de l’embryon dans la graine 
mûre? C’est que les Orchidées, tout en étant des plantes très 
élevées dans la série des Monocotylédones, montrent en même 
temps des arrêts de développement, et des caractères de dégra- 
dation dont certains sont extrêmement curieux. Ainsi leur 
embryon s’arrête de très bonne heure dans son tout premier 
développement; et quand il tombe en léthargie, au moment de 
la maturation de la graine, il consiste simplement en un globule 
arrondi de quelques cellules qui ne montre aucun organe diffé- 
rencié. Cet embryon n’a pas même un point de végétation loca- 
lisé; à plus forte raison, ne comporte-t-il ni axe hypocotylé, 
ni cotylédon : c’est un simple thalle à croissance diffuse. Il ne 


reste comme trace de l'orientation de cet embryon, que les 
cellules flétries de son suspenseur. Là où est inséré ce sus- 
penseur, est la partie inférieure de l’embryon, la région par 
laquelle il s’attachait à l'organisme maternel. Rien donc dans 
la structure de l'embryon des graines mûres, n'autorise l'attri- 
bution de l’Orchidée monandre aux Monocotylédones, pas plus 
que l’embryon semblable des Orobanches ou des Monotropa 
n'autorise l’attribution de ces plantes aux Dicotylédones. Chez 
les Orobanches, les Monotropa, comme chez les Orchidées, 
nous trouvons un arrêt de développement de l'embryon à un 
stade de très grande jeunesse. De même, comme chez les : 
Orobanches, chez le Monotropa, le développement de l’embryon 
des Orchidées pendant la germination, ne lèvera que bien impar- 
faitement les incertitudes que provoque sa structure rudimen- 
taire. Le thalle grossit d’abord de tous côtés. Habituellement 
il apparaît un seul point de végétation, d’où émane une feuille 
solitaire embrassante qu’on ne peut identifier, sans les plus 
grandes réserves, au cotylédon des autres Monocotylédones. 
Par conséquent, bien que la réduction de l'embryon, dans la 
graine mûre des Orchidées monandres, soit un caractère absolu- 
ment général, il n’est pas de ceux qui permettront d’arriver à 
fixer le degré d'élévation des Orchidées par rapport aux autres 
Monocotylédones; bien plus, il ne permet même pas de dire que 
les Orchidées soient vraiment des Monocotylédones. Ce carac- 
tère n’a qu'une seule signification: parvenu à un certain degré 
de perfection, le rameau des Monocotylédones auquel les Orchi- 
dées appartiennent a subi, en même temps que certains perfec- 
tionnements spéciaux, de nombreuses dégradations, de même 
qu’un nouveau système gouvernemental, une nouvelle génération 
humaine apporte avec elle de nouveaux vices. 

Nous avons vu que l’organisation de la fleur des Orchidées 
rentre dans l’organisation générale de la fleur des Monocotylé- 
dones; d’autre part, nous verrons que la structure de l'appareil 
végétatif montre les mêmes affinités. L'attribution des Orchidées 
aux Monocotylédones est donc certaine, bien qu'elle ne puisse 
être faite sur l'embryon. Par leur fleur et leur appareil végétatif, 
les Orchidées sont au niveau organique de toutes les Monocoty- 
lédones. 


L'infère-ovarie des Orchidées monandres nous indique des 
plantes plus élevées que les Monocotylédones à ovaire supère. 

Quant à l’unilocularité de cet ovaire, sa placentation pariétale 
avec nombreux ovules réduits, rapprochée de l’arrêt de dévelop- 
pement que nous a montré l'embryon, rapprochée aussi de ce que 
nous trouverons en étudiant les Orchidées diandres et les Apos- 
tasiées, nous laisse soupçonner qu’il n’y a là qu’un caractère 
régressif et non pas une unilocularité primitive; de telle sorte 


Fig. 12. — Cypripède: Paphiopedium barbatum Lot. 


que les Orchidées deviennent ainsi des plantes infère-ovariées 
dégradées, et par conséquent postérieures aux Monocotylédones 
infère-ovariées à carpelles fermés. Avec nos idées actuelles 
sur la descendance des végétaux, nous serions enclins à dire 
que les Orchidées sont dérivées des Monocotylédones infère- 
ovariées. 

La zygomorphie si profonde de la colonne stylaire, celle de 
l'androcée réduit à une grosse étamine, la coalescence de la 
phalange staminale et de la colonne stylaire ou gynandrisme, 
sont également des caractères qui dénotent une très grande 


l 


élévation organique dont nous ne trouvons pas l'équivalent chez 
les autres Monocotylédones. 

La zygomorphie du périanthe parle dans le même sens, et cette 
indication est encore accentuée par de nombreuses Orchidées à 
périanthe formé de pièces de plus en plus longuement coalescentes. 

Quant au rostellum, il indique une différenciation en vue d’un 
mode très particulier de dispersion du pollen. 

Les Orchidées monandres sont donc des plantes très élevées 
parmi les Monocotylédones; mais, à côté de cette élévation si 
haute, nous constatons de nombreux caractères de dégradation. 
Dans l'arbre généalogique des Monocotylédones, les Orchidées 
monandres sont un rameau issu des formes les plus différenciées. 
Ce rameau est encore des plus puissants aujourd’hui, puisqu'il est 
représenté par 405 genres et des milliers d’espèces ; néanmoins, 
il nous montre, à côté de son grand perfectionnement organi- 
que, de nombreux arrêts de développement. Les Orchidées sont 
les plus élevées des Monocotylédones, mais avec de nombreux 
caractères régressifs et de nombreux caractères de dégradation. 

V. LA FLEUR DES CYPRIPÉDINÉES chez le PAPHIOPEDIUM 
BARBATUM. -- Nous avons réservé trois genres d’Orchidées : 
Cypripedium, Selenipedium, Paphiopedium et une forme pélo- 
rique intéressante de Paphiopedium, l’Uropedium Lindeni. 

Prenons une fleur de Paphiopedium, du P. barbatum(x) par 
exemple (fig. 12) et soumettons-la au même examen que celui 
auquel nous avons soumis les fleurs d’Orchis, de Pterostylis et 
de Lycaste. Nous remarquons que : 

a) L'ovaire est infère. 

b) Le verticille externe du périanthe ne comprend que deux 
pièces, une pièce antérieure grande, à pointe toujours simple, et 
une pièce postérieure encore plus grande, mais dont la pointe 
sera bifide chez le Cypripedium japonicum (fig. 13,B). Il est facile 


(1) Nous nous servirons dans cette partie des noms donnés par les botanistes 
bien que l’usage ne les ait pas encore adoptés : tel est notamment le cas des 
Paphiopedium que les orchidophiles, les amateurs et les horticulteurs, con- 
tinuent à appeler Cypripedium. Avec l’Index Generum Phanerogamarum de 
Th. Durand, nous écrirons Cypripedium, Selenipedium, Paphiopedium au lieu de 
Cypripedilum, Selenipedilum, Paphiopedilum, orthographe adoptée par Pfitzer, 
mais non acceptée par la majorité des botanistes. 


de reconnaître que cette pièce postérieure résulte de la concres- 
cence des ailes ou sépales pairs. Ces sépales sont complètement 
libres chez le Cypripedium arietinum (fig. 13, A), par exemple. 


Fig. 13. — A Cypripedium arietinum R. Br.; 8 C. japonicum Tuuns.; c Paphio- 
pedium concolor Pr1Tz.; D P. longifolium Rcxs.; E diagramme du fruit de Cypri- 
pedium; F de Paphiopedium; G de Selenipedium. 


c) Le verticille interne a frois pièces. La postérieure (fig. 12) 
donne ce joli sabot qui a mérité aux Cypripédinées le gracieux 
nom de Sabot de Vénus. Ce labelle est donc superposé à la pièce 
résultant de l'union des sépales pairs, Les pétales latéraux, très 
différenciés par rapport aux sépales, sont placés dans les inter- 
valles qui séparent le sépale antérieur des sépales postérieurs. 

d) Au centre de la fleur s’élève aussi un gynostème, et cet 
organe se courbe brusquement, de manière à rendre verticale la 
surface du stigmate. Au point où il se courbe, le gynostème 
porte sur sa face antérieure une phalange staminale qui est un 
androcée fortement zygomorphe. Cet androcée est formé de trois 
pièces : une pièce médiane, très grande, plus extérieure que les 
deux autres et pouvant être homologuée à l’étamine impaire ou 


PE IE 


\ARMORATUM. 


À 


AUTHIERI, var. M 


4 


a D, 


\PHIOPEDIUM 


À 


F 


3 — 
antérieure des autres Monocotylédones, par conséquent à l’éta- 
mine unique des Orchidées monandres. Cette pièce ne porte pas 
de sacs polliniques; elle ne produit pas de pollen : on la nomme 
Staminode. À droite et à gauche de ce staminode et coalescent 
avec son pied — au moins dans sa partie inférieure, — on voit 
une petite étamine fertile; soit donc au total deux étamines 
fertiles symétriques, de petites dimensions, et une pièce médiane 
stérile ordinairement très volumineuse. Les étamines fertiles 
sont considérées comme homologues des étamines paires du 
verticille staminal interne des autres Monocotylédones. 

Le staminode présente une région inférieure ou pédicelle, 
brusquement courbée en arrière et s’étalant en lame à droite et 
à gauche de sa crête médiane. Les bords de la lame débordent 
un peu le pédicelle en avant et vers l'extérieur, de sorte que le 
staminode paraît bifide quand on le regarde de face et par 
l'extérieur. La lame du staminode est élargie en forme de bou- 
clier (fig. 14, A, B, C, 0); elle cache complètement le stigmate. 
Quand on la regarde pour la première fois par dessus, on est 
tenté de la prendre pour le véritable stigmate. Comme la fleur 
est largement ouverte, on ne voit 
d’en haut que cette lame du stami- 
node, cachant tous les organes 
reproducteurs (fig. 12). 

Nous avons dit que les étamines 
fertiles, concrescentes plus ou 
moins avec lui, sont situées à 
droite et à gauche du pédicelle du 
staminode (fig. 14, A, B, C, a) Cha- 
cune d’elles comprend un petit filet 
épais, brusquement courbé vers le 
centre de la fleur et un peu aplati en 


Fig. 14. — Paphiopedium barbatum 
une sorte de connectif lamellaire, (Loc) Prirz.. gynostème ou co- 
Ï Le lonne : À vu en avant et par l'exté- 
qui porte de chaque côté et en haut jour: 5 vu de côté: c vu d'en haut: 
1 ini . p P. insigne (WaALL.) PFITZ., gÿnO- 
deux paires de sacs polliniques : D ae dE Nr TA 
chaque paire de sacs donne ulté- x anthères; 0 staminodes; + échan- 
= ; : e du staminode: n stigmate. 
rieurement une loge d’'anthère, la °° ; 
loge la plus proche du plan antéro-postérieur étant sensiblement 


plus petite que l’autre. Dans la fleur des Paphiopedium barbatum 


3 


— 34 — 
et snsigne (fig. 14), le filet se prolonge au delà du point où il 
s’incurve en une petite pointe massive, seule visible quand on 
regarde la phalange staminale par sa face externe. Le pollen 
forme une masse visqueuse. 

e) La colonne stylaire, courbée brusquement en arrière, se 
termine par un grand stigmate fortement convexe, qui montre 
trois sillons convergents : un sillon vertical médian et descen- 
dant, deux sillons latéraux montant obliquement (fig. 14, D, #). 
Ces sillons délimitent sur la surface du stigmate trois plages, 
deux latérales postérieures et inférieures symétriques, petites, 
et une grande plage antérieure impaire, médiane et supérieure. 
Ces trois plages sont luisantes, légèrement visqueuses. Z/ n’y a 
donc pas de rostellum. 

f) Chez les Cypripedium, l’ovaire est uniloculaire, à placentas 
pariétaux fortement bilobés avec nombreux ovules sur toute la 
longueur, comme chez les Orchidées monandres. 

Les ovules y sont minuscules, anatropes et bitégumentés à 
développement tardif. 

Les pièces du périanthe, le gynostème, la phalange staminale, 
le stigmate, se retrouvent identiquement, avec les mêmes carac- 
tères, chez les Cypripedium et chez les Selenipedium. 

Chez les Paphiopedium, l'ovaire, uniloculaire dans le haut, est 
triloculaire dans sa partie inférieure; chez les Selenipedium, il est 
triloculaire dans toute sa hauteur Les placentas sont attachés 
sur les cloisons radiales, dans la partie inférieure de l'ovaire des 
Paphiopedium; ils forment deux bandes saillantes parallèles, dans 
l’angle interne des loges ovariennes des Selenipedium (fig. 13, G). 
Les ovaires des Cypripedium et des Selenipedium présentent donc 
deux dispositifs extrêmes, le premier à carpelles largement 
ouverts, le second à carpelles complètement fermés, et ces 
dispositifs sont reliés par l'intermédiaire des Paphiopedium 
(fig.13,E,F,G). Mais bien que, dans le développement général des 
Phanérogames, les plantes à carpelles ouverts précèdent les 
Phanérogames à carpelles fermés, nous allons reconnaître tout 
à l'heure, en étudiant les Apostasiées, que la manière d’être des 
Selenipedium est primitive dans la série des Orchidées, tandis que 
la manière d’être des Cypripedium est une régression, un retour 
en arrière. Le Cypripedium est une forme plus éloignée de la 


ns — 
souche originelle que le Selenipedium. Ce fait n'est pas isolé. Une 
infère-ovarie très accentuée comporte souvent de ces reculs 
quant à la fermeture des carpelles. 

Diagramme des Cypripédinées. — De même que nous l’avons 
fait pour les Orchidées monandres, nous résumons dans un 
diagramme, les observations que nous 
venons de faire sur les fleurs des Cypri- 
pedium, des Paphiopedium et des Selenipe- 
dium (fig. 15). 


VI. DEGRÉ D'ÉLÉVATION ORGANIQUE DES 
CYPRIPÉDINÉES PAR RAPPORT AUX ORCHI- 
DÉES MONANDRES. — Les Cypripedium, 


les Paphiopedium y compris l’Uropedium Fig. 15. — Diagramme 
des Cypripédinées. 


ll 


et les Selenipedium forment donc un groupe 
bien nettement opposé aux Orchidées monandres, et caractérisé 
par sa phalange staminale à deux étamines latérales fertiles, 
ainsi que par son lobe stigmatique antérieur non différencié en 
rostellum. Tout en ayant acquis déjà des caractères orchidéens 
très accusés, comme le gynostème, la courbure de la région 
stigmatique en arrière et son zygomorphisme, la phalange stami- 
nale zygomorphe, le périanthe très zygomorphe, et dans sa 
forme la plus élevée, Cypripedium, un retour complet à l’ovaire 
uniloculaire, le groupe cypripédien mis en regard des Orchidées 
monandres n’est pas aussi différencié dans le sens orchidéen. 
La phalange staminale est moins condensée, puisqu'elle possède 
encore plusieurs étamines; le lobe antérieur du stigmate n'est 
pas spécialisé pour donner la masse adhésive. On y voit des 
ovaires pluriloculaires. La série cypripédienne est donc plus 
proche de la souche des Orchidées que les Orchidées monandres. 

On regarde le groupe des trois genres Selenipedium, Paphiope- 
dium et Cypripedium comme une petite famille que l’on appelle 
Famille des Cypripédinées ou encore Orchidées diandres, quand 
on veut les opposer aux Orchidées monandres. 

Dans la pratique horticole, on se sert exclusivement du 
terme Cypripedium pour désigner toutes les Orchidées appar- 
tenant au groupe cypripédien. 

Au point de vue de leur élévation organique, les Cypripédinées 


ie 


sont immédiatement inférieures aux Orchidées monandres, puis- 
qu’elles sont moins différenciées que celles-ci. Elles sont immédia- 
tement voisines de ces Orchidées monandres, puisqu'elles en ont 
tous les caractères sauf les quelques particularités que nous avons 
relevées. Elles sont intermédiaires entre les autres Monocotylé- 
dones et les Orchidées. Comment le passage s'est-il fait des 
Cypripédinées aux Orchidées monandres, on l’ignore; on ne 
constate, en effet, jusqu'ici, qu’un hiatus absolu entre les 
Cypripédinées et les autres Orchidées ; on voit bien que les deux 
familles sont proches parentes, mais le détail du passage de l’une 
à l’autre nous est encore inconnu. Faut-il voir dans le staminode 
rabattu sur le haut de la colonne une analogie des Cypripédinées 
avec les Orchidées monandres à anthère couchée, nous n’ose- 
rions pas l’affirmer. Ce qui est certain et bien en harmonie avec 
cette hypothèse qui verrait dans les Orchidées monandres à 
anthère dressée les formes les plus élevées des Orchidées, c'est 
que celles-ci dominent dans les régions froides du globe. Les 
Orchidées monandres à anthère couchée, comme aussi les 
Cypripédinées, sont plutôt réfugiées dans les contrées chaudes (1). 

Liaison du groupe des Cypripédinées avec les Apostasiées. — 
La liaison des Cypripédinées avec les autres Monocotylédones 
est bien indiquée par la petite famille des Apostasiées, que 
presque tous les auteurs, y compris le savant orchidéographe 
Pfitzer, rattachent maintenant, à l’exemple de Robert Brown, aux 
Orchidées. Malgré la grande autorité de ces botanistes, nous 
laisserons cependant les Apostasiées en dehors de l’ensemble 
désigné sous le nom d’Orchidées, car les caractères orchidéens 
ne nous y semblent pas encore suffisamment accusés pour les 
faire rentrer dans les Orchidées, et, d'autre part, étendre l’appel- 
lation d’Orchidées aux Apostasiées, c’est presque enlever toute 
signification à ce mot, puisqu il ne reste plus de caractères pour 
le définir. 


(1) Comme exemples de ce refuge de formes anciennes et par cela même 
souvent de formes-souches vers les régions chaudes du globe, nous nous borne- 
rons à citer les Araucariées, les Cycadées, les Gnetum, le Welwitschia, la 
majorité des Ophioglossées, les Marattiées, le Phylloglossum, etc., etc. 


= — 

VII. LES APOSTASIÉES. — Les Apostasiées ne comprennent 
que deux genres : Neuwiedia et Apostasia, créés l'un et l’autre par 
Blume. Les Neuwiedia sont originaires de la presqu'île de 
Malacca et de l’Archipel Malais. Les Apostasia habitent les 
Indes Orientales, la Malaisie et l’Australie tropicale. 

Chez les Neuwiedia, nous trouvons en haut d’un ovaire infère, 
à la base d’une assez longue colonne stylaire, un périanthe à 
six pièces disposées sur deux rangs: trois externes, trois 
internes. Ces pièces sont semblables entre elles, à l'exception 
de la pièce postérieure ou médiane du verticille interne qui 
est un peu plus grande que les autres, mais non bossuée, 
sans éperon, n'entourant pas les organes reproducteurs. C’est 
l’amorce d'une zygomorphie commençante du périanthe. Les 
étamines, au nombre de trois, toutes fertiles, forment une 
phalange insérée sur la face antérieure de la colonne stylaire 
et tout près de sa base. Il y a donc là encore un androcée zygo- 
morphe et un commencement de gynostème. Ce dernier toutefois 
est encore mal caractérisé, car la colonne stylaire se prolonge 
directement et sans courbure brusque vers la face postérieure dela 
fleur, bien au delà de l'insertion de la phalange staminale. Des 
trois étamines de la phalange, l’une est médiane, antérieure et un 
peu plus externe que les deux autres; ces dernières sont symé- 
triques l’une de l’autre. Toutes trois comprennent un très court 
filet, un peu aminci en lame en arrivant à l’anthère. L'ensemble 
de l’anthère est effilé, les loges de l’anthère dépassant un peu 
inférieurement le connectif; ces loges sont sur la face interne de 
l’étamine. Le pollen est en grains isolés. Dans cette phalange 
de trois étamines des Neuwiedia (fig. 17,A),on reconnaît l’étamine 
médiane antérieure externe des Monocotylédones ordinaires, le 
staminode des Cypripédinées, l'étamine unique des Orchidées 
monandres. Les étamines latérales sont les étamines paires 
intérieures et antérieures des Monocotylédones, les étamines 
fertiles des Cypripédinées. La colonne stylaire est cylindrique, 
allongée, non courbée dans sa partie libre, avec stigmate termi- 
nal, ce dernier consistant en trois petits mamelons. La zygo- 
morphie n’atteint pas la région stylaire ni la région stigmatique 
de l’organe femelle. La coupe transversale de l'ovaire montre 
trois carpelles fermés. Il est triloculaire par conséquent, avec 


pie 


placentas localisés dans l’angle interne des loges ovariennes, sans 
glandes septales; c’est l'ovaire de toutes les Monocotylédones 
infère-ovariées. Les ovules sont petits et nombreux. Ces faits 
sont résumés dans la figure 17, A, qui représente le diagramme 
des Neuwiedia. 


Chez les Apostasia (fig. 16), la différenciation de la pièce 


Fig. 16. — Apostasia Wallichi KR. Br.; A port de la plante: 8 fleur; c fleur 
ouverte; D gynostème; E ovaire coupé en travers. 


médiane postérieure interne du périanthe est beaucoup plus faible 
que chez les Neuwiedia. La zygomorphie du périanthe est donc 
nulle. Par contre la phalange staminale antérieure, au lieu de 
trois étamines fertiles, n'en possède plus que deux; ce sont les 
étamines latérales qui persistent; la médiane antérieure est 
représentée par une sorte de baguette conique; c’est un petit 


staminode (fig. 16, D). Nous retrouvons donc la zygomorphie si 


accusée de l’androcée de toutes les plantes que nous avons étu- 
diées et, à la forme près, le plan de l’androcée des Orchidées 
diandres. L'organe femelle est le même que celui des Neuwiedia. 

Chez les Apostasiées (fig. 17, B), et c’est le résultat vraiment 
intéressant de notre analyse, 


nous trouvons donc et l’amorce 

de la zygomorphie du périanthe, = 
et la préparation de la phalange 

staminale antérieure des Orchi- C@) 


dées. Celle-ci est même très IDE ÈS 

avancée, puisqu'elle va jusqu’à 
d es ae Fig. 17. — Diagrammes; 4 de Neuwie- 

reproduire exactement le plan dia; B d'Apostasia. 

de l’androcée des Cypripédinées. En revanche, l’organe femelle 

ne montre pas encore, sauf ses nombreux ovules à développe- 


ment tardif (1), de caractères orchidéens. 


VIII. LIMITES DU GROUPE ORCHIDÉES. — Les Apostasiées, les 
Cypripédinées, les Orchidées monandres, sont trois termes d’une 
série ascendante ou, pour nous servir d’une expression récente, 
d’un même phylum végétal. Les deux derniers groupes y sont 
plus voisins l’un de l'autre, plus manifestement différenciés 
dans le même sens, que le premier. Le mieux est donc de limiter 
l'expression Orchidées aux familles des Cypripédinées et des 
Orchidées monandres. 

Les Apostasiées relient les Orchidées aux Monocotylédones 
infère-ovariées amaryllioïdes, mais sans contracter de rapports 
avec les Monocotylédones infère-ovariées différenciées dans un 
sens spécial, comme les Musacées, les Zingibéracées, les 
Marantacées. 


IX. DIAGNOSE DES ORCHIDÉES. — Nous pouvons donc main- 
tenant tracer la diagnose des Orchidées. Nous reconnaîtrons une 
Orchidée à l'ensemble des caractères suivants : 

Caractères essentiels: 

a) Ovaire infère. 


(1) D’après la figure de Wallich (fig. 16, E) l’Apostasia Wallichii n’a que 
deux rangées d’ovules sur chaque placenta. 


— 40 — 


b) Gynostème portant antérieurement une phalange staminale 
fortement zygomorphe. La phalange est réduite à une grosse 
étamine médiane introrse, s’il s’agit d’une Orchidée monandre; 
elle présente un staminode médian et deux étamines latérales 
fertiles, s’il s’agit d’une Cypripédinée. L’anthère des Orchidées 
monandres est ordinairement couchée sur le sommet apparent 
du gynostème; elle est plus rarement dressée. Cependant si on 
ne considère que les Orchidées européennes, la forme à anthère 
dressée est beaucoup plus fréquente que la forme à anthère 
couchée. 

c) Le gynostème est fortement courbé dans sa partie supé- 
rieure, de manière à rejeter postérieurement le stigmate et à 
l’amener presque sur le prolongement de sa face postérieure. Le 
lobe antérieur du stigmate, très peu différencié chez les Cypri- 
pédinées, est remplacé par un organe producteur de la masse 
adhésive chez les Orchidées monandres. 

d) Un périanthe zygomorphe par rapport à un plan antéro- 
postérieur. Cette zygomorphie étant surtout produite par le plus 
grand développement du pétale postérieur et du sépale antérieur, 
elle disparaît par arrêt de développement. 

Caractères secondaires. — Comme caractères accessoires, nous 
ajouterons : 

e) Ovaire uniloculaire à placentas pariétaux chez toutes les 
Orchidées monandres. 

f) Ovules très nombreux, très petits, anatropes, bitégumentés, 
à développement tardif. 

g) Graines minimes, scobiformes ou analogues à la sciure du 
bois. 

h) Fleurs hermaphrodites (1). 

:) Embryon sans cotylédon ni axe hypocotylé différencié. 

k) Absence d'albumen et de périsperme dans la graine. 

l) Pollen aggloméré en grains composés ou en pollinies. 


(1) Malgré cet hermaphrodisme, la fécondation des Orchidées est essentiel- 
lement croisée : les insectes sont les agents chargés de porter le pollen d’une 
fleur à l’autre. Ce n’est que par avortement ou par développement imparfait 
que la fleur devient unisexuée chez les Orchidées. Il en résulte souvent un 
polymorphisme floral très accusé. Ex. : Catasetum tridentatum ; Cycnoches 
ventricosum; Oncidium ornithocephalum; Renanthera Lowti, etc. 


m) Racines cylindriques, peu ramifiées, peu nombreuses. 

L'unilocularité de l'ovaire des Orchidées, le défaut de diffé- 
renciation de leur embryon, l'absence d’albumen, les racines 
cylindriques non ou très peu ramifiées, sont des caractères 
régressifs; ils correspondent à des arrêts hâtifs de développement. 


X. OPINIONS DES AUTEURS SUR LA PLACE QU'IL CONVIENT 
D'ASSIGNER AUX ORCHIDÉES DANS LA CLASSIFICATION. — À titre 
de souvenir historique, rappelons que Linné classait les Orchi- 
dées dans son groupe des Gynandres, avec toutes les familles à 
gynostème, comme les Aristoloches, par exemple. De Jussieu 
les a placées dans les Épistaminées. La petitesse de l'embryon 
des Orchidées et son organisation imparfaite, les ont fait ranger 
par Bentham et Hooker parmi les Monocotylédones microspermes. 
Eichler refait un groupe des Gynandres monocotylédones, mais 
il lui enlève toute homogénéité en plaçant les Burmanniacées 
près des Orchidées. Les Burmanniacées n'ont comme caractères 
positifs communs avec les Orchidées que l’infère-ovarie. Quant 
à leur ovaire uniloculaire, à placentas pariétaux et à petites 
graines, ce sont des caractères régressifs qui, à eux seuls, ne 
justifient pas un rapprochement avec des plantes différenciées 
dans un sens aussi spécial que les Orchidées. Van Tieghem 
range les Orchidées dans son ordre des Iridinées, défini par 
l'ovaire infère et par le verticille interne du périanthe pétaloïde. 
Il n'y a pas de rapports entre les différenciations spéciales 
qui caractérisent les Orchidées : phalange staminale antérieure, 
gynostème, courbure postérieure du gynostème — et celles qui 
définissent les Marantacées, les Zingibéracées et les Musacées. 
Ce sont là des rameaux divergents des Monocotylédones infère- 
ovariées, dans lesquelles on peut voir se répéter parallèlement le 
zygomorphisme du périanthe, la réduction des étamines. Quant 
au rapprochement des Orchidées avec les Hydrocharidées, il ne 
repose que sur un caractère négatif : l'absence d’albumen. Ce 
n’est certes pas là une preuve d’affinités communes. 


XI. ÉryMoLoGte. — Le nom d’Orchidée dérive du vocable 
grec Goyis, attribué à la première Orchidée décrite (Orchis 
Morio, Orchis bouffon) par le savant grec Théophraste. Nous 


ne nous chargerons pas de dire pourquoi ce nom fut donné 
à la plante : un vieil auteur français, M. Mordant de Launay, . 
l'expliquait comme suit, dans le Bon Yardinier de 1813 : « Les 
« Orchidées terricoles ont une racine composée de deux bulbes 
« rondes, rapprochées et de grosseur égale ; c’est ce qui leur a 
« mérité le nom grec orchis qu'on ne peut traduire en latin que 
« par le mot festiculus, ce qui leur a fait attribuer certaines 
« vertus et mérité le nom italien d'Amor di Donna. » 

Ce que nos pères admettaient en 1813, pourquoi le modifier 
aujourd’hui? Plus pudibonds, plus hypocrites peut-être, pour- 
quoi bannir aujourd’hui le vocable créé par Théophraste, 300 ans 
avant l'ère chrétienne ? C’est ce que les botanistes se sont refusés 
de faire (1). 

Le nom proposé par de Jussieu : Orchides, plus conforme au 
génie de la langue française, ne fut pas accepté. Tous les bota- 
nistes conservent aujourd'hui aux plus curieuses des fleurs, 
le nom d’Orchidée, se disant que, somme toute, le latin et 
surtout le grec jouissent de privilèges spéciaux... au point de 
vue de l'honnêteté, dirait Boileau ! 


(1) Les amateurs de curiosités historiques pourront consulter l’Herbier et 
l'Histoire générale du bon vieux botaniste Léonard Fuchs, très docte et 
renommé médecin. Traduction française imprimée par Balthazar Arnoullet 
Lyon, 1542. Chapitres CCXII et CCXIII, p. 388 à 391. 


CRAELERE LE. 


PORT DES ORCHIDÉES. 


Dans un groupe aussi nombreux que les Orchidées — 408 
genres et plus de 6000 espèces réparties dans toutes les régions 
du globe! — on doit s'attendre à rencontrer une très grande 
variété de formes en rapport avec les variétés d’habitat de ces 
plantes. 

Jusqu’aujourd’hui les Orchidées n'ont pas été rencontrées dans 
les stations les plus extrêmes: on ne les voit ni dans les lieux 
désertiques, ni dans les lieux constamment submergés. On ne les 
trouve pas non plus parasites au degré des Orobanches, et à plus 
forte raison au degré des Pilostyles. 

Dans l'examen rapide que nous allons faire du port des Orchi- 
dées, nous ne nous occuperons pas d’abord des procédés de 
ramifications que ces plantes emploient pour édifier telle ou telle 
forme ; nous nous bornerons à caractériser le mieux possible la 


forme toute faite; nous verrons ensuite comment ces systèmes 
s'édifient. 


Prenons comme premier type de forme, celle que nous présente 
le Macroplectrum sesquipedale (fig. 18). Cette plante nous montre 
un axe vertical, complètement caché par les insertions de feuilles 
distiques à bases embrassantes. Ces feuilles, également larges de 
la base au sommet, à limbe très allongé, rejetées à droite et à 
gauche, donnent à l’ensemble l'aspect d’un Clivia. Une touffe de 
racines, non rameuses, attache la plante à l’écorce sur laquelle 


elle végète. Cette forme est très fréquente chez les Orchidées et, 
de plus, on peut y rattacher immédiatement un grand nombre de 


Fig. 18. — Macroplectrum sesquipedale. 


modifications secondaires. Ainsi si le limbe des feuilles devient 


proportionnellement très court, la tige conservant sa longueur, 


Wa 
Fig. 19.— Dichaca Fig. 20. — M ystaci- 
vaginata Rous.f.  dium distichum Lor. 


nous avons les petites colon- 
nes du Dichaea vaginata(fig. 19) 
et du Mystacidium distichum 
(fig. 20). Si au contraire, les 
feuilles restant amples ou 
même s'élargissant beaucoup 
dans leur partie limbaire, la 
tige devient de plus en plus 
courte, nous voyons les feuil- 
les se ramasser en une sorte 
de touffe ou de rosace, de 
laquelle émergent les hampes 
florifères. Dans cette touffe, 


les feuilles se partagent en deux groupes principaux. Chez le 
Paphiopedium concolor (fig. 13, c), la tige déjà courte, avec 


feuilles à limbe élargi, zoné transversalement, rappelle certains 
Maranta. 


Chez le Phalaenopsis Schilleriana (fig. 21,0), les feuilles courtes, 
également élargies, un peu épaisses, à faces dissemblables, 
tachetées en dessus, rappellent en grand le port de la Pinguicula 
vulgaris. Avec des feuilles analogues à celles d'un Veratrum, nous 
avons dans le Calanthe veratrifolia (fig. 22) une Orchidée qui 
mime un petit Veratrum, mais avec une hampe beaucoup plus 


} 


Fig. 21. — A Esmeralda Cathcartii Rous. f.: B son pollinarium; € Phaluenopsis 


Schilleriana Rcus. f.; E-F ses pollinies; G Vanda teres Lor.; x Polyrrhiza 
funalis (Loz.) PFiTz.; 1ses pollinies. 


grêle. Si, dans ces Orchidées à feuilles basilaires groupées en 
deux massifs principaux d'entre lesquels partent les hampes 
dénudées, la feuille prend une section transversale triangulaire 
ou lenticulaire tout en demeurant embrassante, nous avons des 
plantes à facies d'’Iris : tels sont le curieux Oberonia iridifolia 
(fig. 23) avec son épi de Plantaginée, et le Maxillaria iridifolia 
(fig. 24, F). 

Inversement la forme de l'Angraecum peut être modifiée par 
augmentation de la longueur de la tige. Si les entre-nœuds de la 


6 — 


tige s'allongent quelque peu, les feuilles 


= — == 


Fig. 22. — Calanthe veratrifolia KR. Br.; 


A port de la plante; 8 fleur; c pollinies. 


Fig. 23. — Oberonia iridifolia Loz.; 
A facies de la plante; B fleur; c co- 
lonne: D pollinies; coupe transversale 
E de sa feuille, r de celle de l'O. acau- 
lis Lo. 


étant raccourcies et 
relevées le long de la tige, 
nous aurons des formes comme 
celles du ZLochkhartia lunifera 
(fig. 25), qui rappellent un peu 
les Stapelia et certaines Euphor- 
bes céréiformes. Dans le Podo- 
chilus scalpelliformis (fig. 26), 
les entre-nœuds de la tige étant 
un peu plus allongés, la pointe 
des feuilles un peu plus écar- 
tée, le bas de la tige commen- 
çant à se dénuder, nous avons 
une ressemblance avec les 
hampes de certains Glaïeuls. 
Chez le Thunia Marshalliana 
(fig. 28), les entre-nœuds sont 
un peu plus allongés et encore 
cachés des 
feuilles, qui vont grandissant 


de la base au sommet. Si la 


par les gaines 


tige se dénude dans sa partie 
inférieure et se renfle régulière- 
ment de bas en haut jusque 
près de l'inflorescence, nous 
avons le port des vrais Dendro- 
bium (fig. 66). Chez le Vanda 
teres(fig.21,G),les entre-nœuds 
encore plus allongés se déga- 
gent des gaines foliacées; mais 
comme en même temps les 
feuilles, peu longues, se rétré- 
cissent et deviennent cylindri- 
ques, on a une plante à allure 
de Mesembryanthemum. 

Les s’allon- 
geant beaucoup, les feuilles 


entre-nœuds 


s’éloignent les unes des autres; 


sal 


 — 
la plante, incapable de se soutenir, s’attache à des supports 
qu’elle contourne en grimpant. L'Orchidée prend l'allure d'une 
liane : telles sont les Vanilles, qui laissent pendre de chaque 
nœud, près de la feuille, une racine aérienne (fig. 201). Dans 
le Galeola altissima (fig. 29), de Java et Bornéo, la longueur de 
la tige peut atteindre trente et quarante mètres; mais tandis que 
chez les Vanilles les feuilles sont encore grandes, ici elles se 
réduisent à de petites écailles. Le genre Galeola est le géant 
du monde orchidéen. 

Les feuilles ne se rejettent pas toujours régulièrement en 


Fig.24.— À Maxillaria setigera Lor..: 8, c Ornithidium densum Roms. f.; D Maxil- 
laria variabilis BAT.; E M. graminifolia Rcus. f.: r M. iridifolia Rcous. f; 
= 5 
G M. marginata, coupe de la fleur. 


deux groupes distiques de chaque côté de la tige; elles sont 
parfois disposées suivant une hélice peu compliquée, égale à 
2]; ou 3/3: le port de ces plantes est sensiblement différent des 
précédentes. Le Phajus Tankervillae (fig. 27) nous en offre un 
exemple fort connu : ses feuilles, assez grandes, rétrécies dans 
le bas, élargies dans le haut, minces, rappellent un peu celles 
des Dracaena ou un Aspidistra à feuilles étroites. Elles partent 
d'une petite masse basilaire légèrement renflée, s'élèvent en 


LL — 


s'écartant du centre comme pour former une gerbe, et laissent 
infléchir leur sommet. Du centre de la touffe, part une grande 
hampe florifère. Les plus externes des feuilles de cette touffe 
sont incomplètes, réduites à leur partie engainante. 

Cette forme de Phajus, réduite à quelques feuilles, parfois 
même à une ou deux, d’entre lesquelles émerge la hampe, est 
celle de la majorité de nos Orchidées indigènes, lorsqu'on ne voit 


s , ue la partie qu'elles amènent 

Ÿ au-dessus de la surface du 

\E sol. Le port des Anæctochilus 
\s rentre dans le même type, 
ÿ mais leurs feuilles larges leur 
\ impriment une physionomie 
\ è 0 toute spéciale. Chez le Polyr- 
à V/ rhiza funalis (fig. 21, H), qui 


| semble nous offrir à la fois le 
\Y maximum de réduction de 
\ ces formes, comme aussi 
des formes d’Angraecum, la 
plante ne montre qu’une 
sorte de petit bourgeon écail- 
leux surmontant une touffe 
de grosses racines vertes, 
chargées de chlorophylle. A 
la jonction des racines et du 


bourgeon, la plante émet de 
petites hampes florales exces- 


Fig.25.— Lockhartia Fig. 26. — Podo- 
lunifera RcHs. f. chilus scalpelli- | 
formis BL. par une fleur, qui paraît 


sivement grêles, terminées 


énorme comparativement à la hampe et au volume de la plante. 


Dans quelques Pogoniées, comme Nervilia Gammieana (fig. 30) 
et Corysanthes picta (fig. 31), nous voyons l’Orchidée prendre 
l'allure d’une Aroïdée minuscule ou d’une germination de Dios- 
corée, la plante ne développant qu’une grande feuille, dont le 


— 


(1) Cette forme du Nervilia est celle de la plante après la floraison. Au 
moment de celle-ci, la hampe florifère apparaît seule, entourée à sa base par 
des feuilles réduites à leur gaine sans limbe (fig. 30, 4). 


“VUOTMIANVHNO VIILSAHA AUHINVILd AU 


te — 
limbe est rabattu sur le pétiole. On dirait quelque Caladium 
rabougri. Le Nervilia présente une grande feuille pétiolée, por- 
tant à angle très obtus un limbe large, triangulaire, échancré 
à la base; sa nervation est en éventail (fig. 30, B). Des taches plus 
sombres couvrent les secteurs de la feuille. Le pétiole est entouré 
par les gaines de feuilles plus externes, réduites à leur région 
engainante sans limbe. Dans le Corysanthes picta, le limbe foliaire 
est réticulé. 

Le curieux Scuticaria Sieelei (fig. 32) mérite une mention à 
part dans cette énumération du facies des Orchidées. La plante 
vit en épiphyte sur des arbres et pend vers le sol; c'est une souche 
très ramifiée, avec petites écailles. Les courts rameaux pendants 
se terminent par une longue feuille cylindrique, qu'un amateur 
superficiel pren‘rait pour une tige verte. Le facies de la plante 


Fig. 27. — Phajus Tankervillae BL. 


est déterminé surtout par ces grandes feuilles raides, réunies en 
grosses touffes pendantes. 
Beaucoup de nos Orchidées de serre ont de même leur port 
défini par la forme d’une ou d'un très petit nombre de feuilles. 
Chez le Brassavola Perrinii (fig. 33, D), une tige grêle, élancée, 


4 


entourée de petites feuilles réduites à leur gaine et sans limbe, 
se termine par une feuille qui diffère des autres par son limbe 
allongé et épais. Cet organe est un peu plus large que celui des 
Scuticaria. Un sillon médian très net partage sa surface supérieure 


Fig. 28. — Thunia Marshalliana Rous. f.; À port et facies de la plante; 8 fleur; 
c gynostème et éperon. 


en deux plages symétriques. Toutes ces tiges et la feuille qu’elles 
portent sont dressées côte à côte en touffe. Cette même forme, 
réduite aux proportions d’une touffe de mousse à brindilles serrées, 
nous donne le port de la jolie petite Orchidée muscoïde, le Masde- 
vallia triaristella (fig. 34) : dans cette petite espèce, chaque tige 
porte au moins deux grandes feuilles. Dans les Sfelis (fig. 35, A) 
et le Restrepia antennifera (fig. 35,G), qui reproduisent le dispositif 
de Brassavola, le limbe de la feuille s’élargit et s’amincit un peu, 
tout en conservant une certaine carnosité. La face inférieure du 


limbe présente deux surfaces concaves, réunies par la nervure 
médiane très saillante. Si, dans cette forme à feuilles terminales 
dominantes, plusieurs entre-nœuds de la tige-support se renflent, 
nous avons des bouquets d’une ou deux 
feuilles, terminant des tubercules allongés 
réunis en touffe chez le Laelia furfuracea 
(Gg.33,4A)le Cattleya Victoria Regina (fig. 36), 
ou isolées les unes des autres par de longues 
tiges  écailleuses 
comme chez le 
Rodriguezia de- 
cora. Beaucoup 
plus fréquemment 
encore, la partie 
renflée de la tige 
ne comprend 
qu’un entre-nœud, 
et la grande feuille 
s’élance du som- 
met d’un tubercule 
en bouteille ven- 


true, comme chez 
Fig. 29.— Galeola altis- |’ Epidendrum ne- 
sima Rcus. f. À port 
réduit au 1/9; 8 fleur: #orale (fig. 37, D), 
c labelle développé; I : 3 t 
FER -’ le Lycaste macro- mieana Hook. f.; A pendan 
D pollinies; E fruit; ? : la floraison; B après la 
F graine. phylla (fig. 7, D}, floraison. 
le Gongora galeata (fig. 185). 
De même que nous avons trouvé des Orchidées mimant cer- 
taines Aroïdées, il en est quelques-unes, principalement dans la 
petite série des Glomériées, qui prennent un aspect graminiforme 


ou joncéen. 


Fig. 30. — Nervilia Gam- 


Pour en finir avec ces facies d’Orchidées, il convient de 
signaler encore celui des Orchidées décolorées de notre pays, qui 
rappelle la forme des Monotropa. Ces Orchidées n’émettent à la 
surface du sol que de petites hampes dressées, isolées, ne 
portant que quelques écailles. Leur teinte blanc sale mêlé de 
jaune ou de roux, leurs tiges garnies d’écailles, rappellent les 


Orobanches. Bien entendu, pour le moment, nous ne parlons 


Fig. 31. — Corysanthes picta BL. 


que de la partie de la plante 
émergeant du sol, l’aspect de 
la partie enterrée étant tout 
différent. 


Dans cetteétude du port des 
Orchidées, nous avons consi- 
déré ces plantes sans souci du 
milieu où elles vivent, et, par 
suite, il y a quelque chose 
d'’incomplet dans la physiono- 
mie que nous leur avons assi- 
gnée. Quelques mots suffñront 
pour réparer cette omission. 


L’Orchidée sous ses formes d'Anpraecum sesquipeduale, de Thunia 
le] , 


| 
} 
| AU 


Fig. 32. — Scuticaria Steelei 
LINDL. 


Marshalliana, de Stelis, d'Epidendrum 
nemorale, etc. se trouve dans les clai- 
rières des forêts tropicales à la surface 
des troncs d'arbres couchés ou renver- 
sés : là elles forment des touffes dressées, 
posées sur la plante support. Leurs 
racines grises courent à la surface de 
l'écorce sans y pénétrer, ou même 
viennent pendre librement dans l'air 
humide. Chez le Chysis bractescens 
(fig. 162) nous voyons l’Orchidée à tuber- 
cule aérien pendre de son support en 
écartant ses touffes de feuilles. Cette 
attitude pendante dans ce même milieu 
est constamment celle des Orchidées à 
forme de Scuticaria, dont l'isolement 
apparent de tout sol peut être poussé 
extrêmement loin. 

C’est à ces Orchidées vivant à la surface 
des arbres, loin du sol et parfois même, 
presque complètement suspendues dans 


l'air, que s'applique la dénomination d'Orchidées épiphytes. 


Le mode de croissance des Orchidées épiphytes fut longtemps 
un objet d’étonnement pour les botanistes européens. Habitués 
aux plantes de nos climats septentrionaux, le Gui était la seule 
plante phanérogame connue vivant sur d’autres plantes. Ils en 


conclurent que l'Orchidée épiphyte était un véritable parasite, 
c’est-à-dire un végétal se nourissant des tissus vivants de la 
plante lui servant de soutien. Robert Brown et Lindley furent 
les premiers à montrer l’erreur commise en confondant l'épiphy- 


Fig. 33. — À Laelia furfuracea Lou... port: 8 L. Digbyana BNtu:; c fleur; D Brus- 
savola Perrinii Loz., port; E Sophronitis cernua LoL., port; F anthère de Laelia 
Pervrinii Loc. vue par dessous; G son pollinarium vu de côté; x Laelia acumi- 
nata Loc, pollinarium vu par dessus. 


tisme de l’Orchidée et le parasitisme du Gui. Avant eux, les 
botanistes émettaient souvent les opinions les plus incroyables 
au sujet de ces plantes. On en trouve la preuve dans ce passage 
d’un recueil très important, le Botanical Register. Décrivant, en 
1817 (tab. 220), l'Aerides (Sarcanthus) paniculatum, un auteur 
écrit: « Les plantes de l’air, » — tel était le nom donné aux 
Aérides pendant la première moitié du siècle, — « possèdent la 
« faculté de croître quand elles sont suspendues et privées de 
« tout autre aliment que ceux venant directement de l'atmos- 
« phère. Les plantes d’autres genres, ainsi que celles d'autres 


— 54 — 
« tribus, jouissent de cette même faculté. Pour aucune de 
« celles-ci, toutefois, cet état ne doit être regardé comme étant 
« celui qui leur est préférable, mais assurément comme étant 
« celui qu’elles peuvent supporter, comme la carpe qui, on le 
« sait(??), peut vivre hors de l’eau, quand elle est tenue dans une 
« cave sombre. » 

Les Orchidées en lianes de la forme de Vanille habitent les 
parties plus assombries des forêts tropicales : elles s'élèvent 


Fig. 34. — Masdevallia triaristella Rens. f. 


en s'appuyant aux arbres et amènent ainsi leur feuillage à la 
lumière, courant horizontalement dès qu’elles ont réussi à amener 
leurs feuilles au jour. 

L'Orchidée à rosace foliaire surmontant directement l'appareil 
radical a des habitats variés. On la rencontre aussi bien sur les 
arbres renversés des contrées tropicales que sur le sol, dans 
les clairières et dans les fourrés. Dans les pays septentrionaux, 
les Orchidées -— et spécialement nos Orchidées indigènes — 
paraissent par pieds isolés au milieu de petites graminées, dans 
les prairies gazonnantes ou dans les bois herbeux. 


Les Orchidées décolorées, parasites, à hampes écailleuses, 
comme le Neottia Nidus-avis, l'Epipogon aphyllus (Ag. 38), habi- 


Fig. 35. — A Stelis, port: 8 fleur agrandie; c Ocfomeria, port: D fleur après 
ablation des pétales et des sépales (agr.); E Pleurothallis cardium Rous. f., 
port; F PI. velaticaulis Loi., fleur; G Restrepia antennifera H. B. K.; H Mas- 
devallia Estradae Roms. f.; 1 le fond du périanthe ouvert; k Cryptophoranthus 
atropurpureus RoDr., fleur; L Scaphosepalum verrucosum Pr1Tz., fleur; M Physo- 
siphon Loddigesii Loz., fleurs; N Lepanthes Calodictyon Hook.f., port; o sa fleur. 


tent les bois obscurs, émergeant à peine du terreau meuble 
provenant de la décomposition des feuilles mortes. 


CÉHAPTIRE AE 


LA) FIGE: 
SA CROISSANCE ET SA RAMIFICATION. — LES RHIZOMES. — LES 
TUBERCULES AQUIFÈRES OU PSEUDO-BULBES. — LES TUBER- 


CULES SOUTERRAINS 


Dans l'Angraecum (Macroplectrum) sesquipedale (fig. 18), la tige 
est une colonne verticale, cylindrique, de même calibre dans 
toute sa hauteur. Sa surface est cachée par les gaines foliaires. 
Elle croît par son sommet, émettant de nouvelles feuilles, mais 
sans jamais produire une hampe florifère. A sa base naissent 
des racines qui se forment de plus en plus haut à mesure que 
la plante vieillit. Cette tige atteint presque immédiatement son 
calibre normal et, à partir de ce moment, ne croît plus en diamètre. 

Le bourgeon qui la termine est large et constamment actif. 
Cette tige d’une seule venue s’allongeant toujours est dite m0n0- 
podique. Les bourgeons placés dans l'aisselle des feuilles supé- 
rieures de l’'Angraecum donnent tous des tiges florifères très 
différentes de la tige principale. Elles sont grêles, leur surface 
est nue. Elles portent vers leur partie supérieure quelques 
écailles espacées, à l'aisselle desquelles naît une seule fleur. 

L'opposition des tiges florifères, qui sont ici des tiges de second 
ordre, et de la tige principale est complète et se traduit même 
dans la structure de ces tiges. L'importance relative des faisceaux 
réparateurs par rapport aux faisceaux foliaires est bien plus 


66 


grande dans les hampes que dans la tige principale. Inversement, 


dans la tige principale, les faisceaux qui se rendent aux feuilles 
sont plus volumineux, plus différenciés que dans les hampes 


Fig. 36. — Cattleya Victoria Regina O'BRIEN. 


florifères. Ce premier exemple nous montre un dimorphisme très 
accusé des tiges. 

Ces tiges monopodiques sont peu fréquentes chez les Orchi- 
dées : elles se rencontrent surtout chez les Sarcanthinées (Aéri- 
dées et Pachyphyllées) ainsi que chez les Dichaeniées. 

Lorsque les entre-nœuds de la tige principale deviennent très- 
courts, cette tige prend une forme conique ou pyriforme; elle 


n'a plus aucune partie libre, les insertions de ses feuilles sont 
contiguës, et les racines naissent presque au voisinage de son 
bourgeon terminal; telles sont les tiges des Phalaenopsis (fig. 39) 
et surtout du Polyrrhiza funalis. Dans le Vanda teres au contraire, 
les entre-nœuds de la tige étant plus allongés, une partie de la 
surface de la tige est mise à nu. La tige paraît plus grêle, les 


Fig. 37.— A Cattleya labiata Loi. var. Mossiae, port; B anthère vue par dessous 
avec les 4 caudicules; c pollinie avec candicule vue de côté; D Epidendrum nemo- 
vale Loz., port; E E. cnemidophorum Rcus. f., facies de la plante; Fr E. (Hor- 
midium) pygmaeum Hoox., port; G pollinarium. 


différences entre tige feuillée et hampes florifères tendent alors à 
s’atténuer. 


Prenons, comme second exemple, la tige dans un pied d’Orchis 
militaris au moment de la floraison. Au dessus d’un tubercule 
brun sombre ridé, flétri, qui lui a donné naissance, nous trouvons 
une tige qui porte plusieurs feuilles à insertions très rapprochées. 
Dans cette région inférieure, les nœuds sont presque contigus. 

A ce niveau naissent des racines adventives, cylindriques, non 
ramifiées, disposées en cercle tout autour de la tige. La première 
feuille ou les premières feuilles sont réduites à des gaines sans 
limbe; les suivantes, plus grandes, ont un limbe bien développé. 


NL — 
Plus haut vient un entre-nœud très long, au-dessus duquel la tige 
ne porte plus que de petites écailles et, dans l’aisselle de 
celles-ci, des fleurs. Le bourgeon terminal de la tige s’est 
épuisé en donnant cette inflorescence ; sa croissance est arrêtée. 
La tige de l’Orchis militaris, comparable dans sa partie inférieure 
à la tige feuillée de l'Angraecum, est au contraire assimilable à 
ses hampes fructifères dans sa 
partie supérieure. Le dimor- 
phisme signalé chez l’Angraecum 
entre les tiges feuillées et les tiges 
florifères n’existe plus ici. Il ny 
a plus qu’opposition entre les 
deux extrémités d’un même or- 
gane. Pour amener la conservation 
de la plante d’une année à l’autre, 
un bourgeon axillaire de l’une des 
feuilles inférieures, au lieu de 
rester au niveau de l’aisselle où il 
s'est formé, s’invagine dans un 
pédoncule creux, comme le ferait 
l'extrémité d'un doigt de gant 
qu'on retourne. À mesure que le 
pédoncule s’allonge, le bourgeon 
s'éloigne de plus en plus de la 
tige-souche ; en même temps, 
immédiatement au-dessous du 
bourgeon, se forme une grosse 
touffe de racines adventives coales- 
centes. L’ensemble de ce bour- 


geon axillaire et de cette touffe de 
racines adventives forme un tuber- Fig. 38. — Epipogon aphyllus Sw. 
cule blanc, lisse, gorgé de substances nutritives qui hivernera 
dans le sol. L’année suivante, le bourgeon du nouveau tuber- 
cule produira la nouvelle tige. Par suite même de l'origine de son 
bourgeon, la tige de l’Orchis militaris est toujours une tige 
axillaire et ses rapports sont constamment les mêmes. Toutes 
ces tiges sont donc équivalentes; toutes sont successivement 
tiges feuillées et hampe; leur croissance est limitée. 


— (65 == 


Analysées de bas en haut, ces tiges d’Orchis nous montrent des 


variations de structure en rapport avec la présence des feuilles 


ordinaires ou la présence des écailles bractéennes. 


Fig. 39. — Phalaenopsis Stuartiana. 


— LÉ — 


Dans un grand nombre de nos Orchidées indigènes, nous trou- 
vons des tiges comme celles de l’Orchis militaris et des tubercules 
souterrains ayant la même organisation. Les tiges portent un 
nombre de feuilles variable d’une espèce à l'autre. Au lieu d’une 
touffe de racines adventives complètement concrescentes, insérée 
sous le bourgeon hibernant, nous voyons les racines devenir plus 
ou moins rapidement indépendantes, le tubercule au lieu d’être 
simple, se termine par 2, 3, 4... pointes : il est, comme on dit, 
palmé ou digité. La réserve nutritive destinée à subvenir au 
développement printanier du bourgeon est amylacée et mucila- 
gineuse. Elle est accumulée dans les régions parenchymateuses 
qui séparent les faisceaux libéro-ligneux des diverses racines les 
unes des autres et de la surface. Les caractères essentiels de ces 
tubercules de nos Orchidées indigènes sont leur bourgeon 
d'origine axillaire, le mode d'enfouissement du bourgeon et la 
touffe de racines adventives insérées à sa partie inférieure. Quant 
aux tiges issues de ces tubercules, elles n’atteignent jamais une 


Fig. 40. — Figure schématique de la ramification des Orchidées : A un sympode 
acranthe; 8, c, D Orchidées à sympodes pleuranthes : B sans entre-nœud épaissi; 
c avec entre-nœuds grossis; D sympode pleuranthe à pseudo-bulbes arrondis; 
a rameau terminal, partie terminale de la pousse; b base de la pousse annuelle: 
41, Di, Aa, da, 43, bs indiquent chaque fois une nouvelle pousse annuelle. 


grande taille : elles ne vivent que quelques semaines pendant la 
belle saison. 


La tige principale persistante ou les tiges axillaires indépen- 
dantes, sont deux manières d’être de la tige très caractérisées chez 
les Orchidées; mais ce n’est pas à beaucoup près la manière 


— 62 — 


d'être la plus répandue. Prenons un Xylobium pallidiflorum 
(fig. 7, A); nous y voyons une première tige, rampante dans sa 
partie inférieure initiale, qui se redresse dans sa partie anté- 
rieure. La portion rampante de cette tige est couverte de 
petites feuilles écailleuses. Sa face inférieure, appliquée sur le 
sol, produit de nombreuses racines. Sur la partie de la tige qui 
est redressée, on trouve des feuilles plus développées ; les infé- 
rieures encore réduites à leur partie engainante et sans limbe, les 
plus élevées avec gaîne, portion rétrécie, représentant un pétiole, 
et un limbe bien caractérisé. C’est la pousse d'une année, par 
exemple; mais, l’année suivante, un bourgeon axillaire de l'une 
des écailles placées sur la partie de la tige qui commençait à se 
redresser, donne par son développement une pousse toute sem- 
blable à celle que nous avons décrite, et par un fait d’usurpation 
fréquent chez les végétaux, vient placer sa région rampante dans 
le prolongement même de la région rampante de la première tige. 

Le même fait peut se répéter un grand nombre de fois. A 
première vue, nous avons alors une plante qui présente une tige 
inférieure rampante à la surface du sol couverte d’écailles, portant 
des racines sur sa face qui touche le sol, et portant latéralement 
des tiges dressées, sans racines, à feuilles complètement diffé- 
renciées. Les entre-nœuds de la tige rampante demeurent courts; 
leur section transversale est une ellipse déprimée inférieurement. 
Les entre-nœuds de la tige aérienne sont allongés, même 
dénudés; leur section transversale est circulaire. Une étude plus 
attentive montre les relations réelles des tiges aériennes et des 
divers segments de la tige rampante; mais il n’en reste pas moins 
cette impression, que la plante présente un rhizome et des pousses 
aériennes ; et, en effet, la structure de la tige n’est pas la même 
dans la tige rampante et dans les tiges dressées. 

Dans la tige rampante, les faisceaux libéro-ligneux ou faisceaux 
conducteurs des fluides nourriciers sont fortement rapprochés de 
l’axe de figure de latige; leur partie réparatrice est très déve- 
loppée; les portions sortantes dans les feuilles sont très réduites. 
On trouve de plus un réseau radicifère, c’est-à-dire un réseau 
d'insertion de racines, développé à la périphérie de l’ensemble 
des faisceaux de la tige. Le développement et la localisation de ce 
réseau radicifère est naturellement en rapport avec le développe- 


ment et la localisation de l'appareil radical de la plante. Ce 
rhizome du Xylobium, formé, comme nous l’avons vu, par une 
suite de parties rampantes de pousses axillaires de plus en plus 
récentes, diffère profondément des tiges monopodiques des 
Angraecum et des Orchis, dues tout entières au fonctionnement 
d’un même bourgeon terminal. 

Les botanistes appellent sympodes les tiges formées de pousses 
d’ordre successif, ajoutées bout à bout et simulant une tige unique. 

Ce même Xylobium pallidiflorum produit une troisième sorte 
de tiges: certains bourgeons axillaires des écailles du rhizome, 
semblables à ceux qui donnent les pousses feuillées, donnent 
chacun une tige très grêle avec feuilles petites, réduites à leur 
portion engainante, sans limbe. Les entre-nœuds de ces tiges 
grêles sont allongés. Les nœuds supérieurs portent chacun une 
petite bractée écailleuse, dans l’aisselle de laquelle se développe 
une fleur. Ces tiges grêles sont des hampes florales. La partie 
des faisceaux libéroligneux qui se rend à leurs feuilles est réduite, 
comparativement à ce que nous la voyons dans les tiges feuillées. 
Naturellement les hampes n'ont pas de réseau radicifère. 

Dans le Xylobium pallidiflorum, nous trouvons donc, en 
résumé, trois formes de tiges, selon qu’elles portent les feuilles 
ou les fleurs, ou qu’elles fixent la plante au sol. A chacune d'elles 
correspond une structure qui lui est propre. 


La manière d'être des tiges du Xylobium est de beaucoup la plus 
répandue chez les Orchidées. Jetons un coup d'œil rapide sur 
quelques unes de ses nombreuses modifications. Les tiges flori- 
fères au lieu d'être indépendantes peuvent n'être que la termi- 
naison de la tige feuillée : Epidendrum cnemidophorum (fig. 37, E). 
Le célèbre orchidographe Pfitzer désigne sous le nom de 
Sympode acranthe, le sympode résultant de l'adjonction des 
parties inférieures des pousses dont les extrémités sont florifères 
(fig. 40, A). Si les tiges florifères proviennent de bourgeons axil- 
laires de la pousse feuillée, comme chez le Maxillaria graminifola, 
et par suite si elles n’interviennent pas dans la constitution du 
rhizome sympodique, celui-ci est qualiñé Sympode pleuranthe 
(fig. 40, B, c, D). Ces caractères du Sympode — acranthe ou 
pleuranthe — sont utilisés par Pftzer pour établir les grandes 


coupes de sa classification des Orchidées monandres acrotones. 
Ils ont en effet une très grande généralité, mais leur valeur comme 
caractère indiquant la descendance est-elle bien aussi grande que 
le suppose l’usage qu'en fait Pfitzer ? Nous ne le croyons pas: ce 
que nous savons de l’appareil végétatif des plantes nous indique 
simplement qu’ils se sont reproduits plusieurs fois dans des séries 
divergentes, mais qu’ils sont peu propres à définir ces séries. 
Commodes pour la détermination, ils coupent peut-être artif- 
ciellement l’ensemble des Orchidées monandres acrotones. 


matophyllum speciosum B1., port.; G Grammangis Ellisii Rchb. f., port; H coupe 
de la fleur; 1 pollinie. 


Qu'’elles appartiennent à un sympode acranthe ou à un sympode 
pleuranthe, les tiges des Orchidées demeurent toujours assez 
petites. On cite parmi les plus grandes Orchidées le Grammato- 
phyllum speciosum (fig. 41, F) qui a 3"20, le Lissochilus giganteus 
dont la tige atteint 1"80, l'Arundina bambusifolia qui mesure 
1"50, mais ce sont là des tailles exceptionnelles. Même dans 


les Orchidées que les horticulteurs appellent caulescentes, la: 


taille ne dépasse pas 80 centimètres. Dans un grand nombre de 
ces Orchidées caulescentes, les tiges dressées conservent une 


ANGR ÆCU 
ÆCUM MODESTUM 


trace de leurs rapports avec les éléments du rhizome : on voit par 
exemple des racines adventives naître aux régions nodales. 

Dans les Orchidées en liane, telles que la Vanille (fig. 193) et 
le Galeola altissima (fig. 29), nous avons dit que la tige pouvait 
atteindre une longueur exceptionnelle, quarante mètres parfois ! 
Sur ces tiges, les entre-nœuds sont très longs, leur surface est à 


_nuet, tout le long de la tige, les feuilles sont semblables : petites 


écailles insignifiantes chez le Galeola, feuilles à limbe large 
ovalaire, brièvement pédonculé chez les Vanilles. En général, 
une racine adventive naît près de 
chaque feuille. Ces longues tiges des 
Orchidées-lianes appartiennent au 
même type que les sympodes des 
Orchidées rampantes; ce sont des 
sympodes et en particulier des sym- 
podes acranthes. 


Dans les Orchidées des régions 
froides, par suite des nécessités im- 
posées par l’hibernation, le rhizome 
rampe dans le sol au lieu de demeurer 
à la surface. Privé de lumière, il se 
décolore. Ses écailles deviennent 
charnues ou membraneuses, très 
petites, et le rhizome émet de très 
nombreuses pousses latérales; les 
racines ne demeurent plus localisées 
à la face inférieure: il en naît même Fis- 42. — Liséera ovata R. BR. 


sur la face supérieure. Ces rhizomes très rameux, à pousses 
souvent serrées, figurent une sorte de griffe dont les bourgeons 
terminaux se redressent et produisent des hampes florales : 
Exemple, le Listera ovata (fig. 42). Lorsque la plante vit dans 
un milieu très riche en matières organiques, comme l'humus 
provenant de la décomposition des végétaux, la plante peut 
offrir des caractères de dégradation très accusés : ses racines 
disparaissent, les écailles foliaires deviennent très irrégulières, 
et c'est à peine si on peut reconnaître à cet organe la valeur de 
tige. Il devient une sorte de thalle, ressemblant à une végétation 
5 


"60 


fungique. On appelle quelquefois ces rhizomes coralloïdes. Celui 
de l'Epipogon aphyllus (fig. 38) nous servira de type. 


Il existe de nombreuses transitions entre ces diverses manières 
d'être de la tige, — entre les tiges feuillées et les hampes, — 
entre les tiges sympodiques et les tiges monopodiques — entre 
les divers types de sympodes. 

Déjà dans le Xylobium pallidiflorum, la tige qui porte les 
grandes feuilles se renfle sur quelques entre-nœuds. Cette dispo- 
sition est encore plus accusée dans le Chysis bractescens. Les 
tiges dressées de ces Orchidées sont donc capables de se renfler 
et de se transformer en réservoirs. La substance mise en réserve 
étant essentiellement de l’eau destinée à subvenir aux besoins de 
la plante pendant la saison sèche, 1l convient de nommer les 
renflements où cette eau s’emmagasine des renflements aquifères 
ou des fubercules(1) aquifères. 

Ces tubercules aquifères des Orchidées ont le même rôle 
physiologique que les tubercules aquifères des Utriculaires ter- 
restres (Utricularia montana, p. ex.) : emmagasiner de l'eau 
pendant la période humide, et la tenir à la disposition de Ia 
plante pendant la période sèche. Est-ce à cette ressemblance 
physiologique, jointe à une certaine analogie physiognomonique 
de ces Utriculaires avec les Orchidées, qu’est due l’habitude de nos 
horticulteurs, et non des moindres, de placer les Utriculaires dans 
leurs listes d'Orchidées ? Il est vrai que ces plantes fort curieuses 
réclament la serre chaude comme les Orchidées tropicales; mais 
cette seconde raison n’a pas plus de valeur que la première. 

Les horticulteurs et les orchidophiles appellent pseudo-bulbes les 
tubercules aquifères des Orchidées. Le mot est aussi malheureux 
que possible, mais, comme il est d'usage courant, il m’arrivera 
comme à mes confrères de le laisser échapper. Que les botanistes 
de profession me le pardonnent: ils ont bien proposé de les appeler 
aérobulbes, tubercules aériens (Lufthnollen)! 


(1) Bien que le mot tubercule implique ordinairement l'idée d’organe 
pourvu de points de végétation appelés à se développer ultérieurement, ce 
qui n’est pas toujours le cas de ces tubercules aquifères des Orchidées, ce mot 
est celui dont l’usage a prévalu. Nous nous en servirons donc tout en insistant 
sur le sens spécial qu'il a dans la terminologie orchidéacéenne. 


Les pseudo-bulbes des Orchidées occupent tantôt plusieurs 
entre-nœuds de la tige, tantôt un seul: dans le premier cas, 
Pfitzer les appelle homoblastiques ; Laelia harpophylla, Ansellia 
africana (fig. 43), Chysis bractescens (fig. 162); dans le second cas, 
hétéroblastiques : Odontoglossum caudatum, Bulbophyllum Lobbii, 
Zygopetalum Gauthieri. Ils se traduisent dans la structure de la 
tige par un grand développement de la masse parenchymateuse 
comprise entre les faisceaux de la tige. L'écorce ou partie 


Fig. 43. — Ansellia africana Loz. 


superficielle de la tige extérieure au système des faisceaux n’in- 
tervient pour ainsi dire pas. Le nombre des faisceaux y devient 
très considérable. 

Ce sont là des ressemblances anatomiques avec les tubercules 
aquifères de l’Ufricularia montana, qu’il est bon de souligner. 
Presque tous sont encore remarquables par la dureté de leur 
surface qui est quelquefois vernie, silicifiée. La résistance de 
cette surface est due presque exclusivement à l’épaississement 


ER pr ee 


des cellules épidermiques : tantôt, ce sont les cellules mêmes 
qui sont fortement sclérifiées : Dendrobium thyrsiflorum, Odon- 
toglossum citrosmum, Zygopetalum Gauthieri, Oncidium Weltonit ; 
ailleurs, comme chez Laelia harpophylla et divers Cattleya, ce 
sont les couches cuticulaires de l’épiderme qui ont pris un 
développement inusité. Très souvent, la surface des tubercules 
aquifères est encore protégée par une membrane sèche, presque 
blanche, qui n’est autre qu’une gaine foliaire, ou une feuille 
réduite : Chysis aurea, Dendrobium thyrsiflorum, etc. 

La forme fondamentale des pseudo-bulbes hétéroblastiques est 
nécessairement un long fuseau; celle des pseudo-bulbes homo- 
blastiques est ou un ovoïde ou une bouteille renflée inférieure- 
ment. Parmi les formes dérivées du fuseau, on trouve des 
tubercules lagéniformes, claviformes, cannelés, ronds, anguleux, 
gros ou grêles(1) etc. Par la forme sphérique des tubercules aériens 
des Cælia, on passe aux disques mous des ÆEria. Parfois leur forme 
rappelle celle d’une poire : Lycaste plana, Polystachia Ottoniana; 
d'un cornichon à côtes : Dendrobium cucumerinum ; d’ure corne : 
Diacrium bicornutum; d'une bouteille : Cælogyne (Pleione) lage- 
naria ; d'une massue : Cattleya superba, Dendrobium tortile, Laelia 
Perrinirs etc. 

Les formes des pseudo-bulbes varient souvent d’espèce à 
espèce. Cette variabilité de formes se manifeste parfois sur le 
même pied, d'après l’âge des pseudo-bulbes ou selon la culture à 
laquelle la plante est soumise. Les pseudo-bulbes du Cælogyne 
Rossiana sont tantôt ovoïdes, tantôt subpyriformes. 

En vieillissant les pseudo-bulbes se racornissent, la matière 
charnue diminue et se dessèche plus ou moins. Dans certaines 
espèces, ils prennent une consistance fibreuse. Les pseudo-bulbes 


(1) Les pseudo-bulbes sont ovoïdes chez l’Epidendrum bractescens, oblongs 
chez le Laelia elegans, ancipités chez l’Odontoglossum Hallii, cylindriques 
chez le Cattleya Loddigesiüi, coniques chez l’Eulophia guineensis, fusi- 
formes chez l'Acanthephippium javanicum. Chez le Laelia purpurata, ils ont 
parfois un mètre de haut. Ils sont filiformes chez le Pleurothallis ruscifolia, 
plissés chez le Lycaste lasioglossa, turbinés chez le Cœlogyne praecox, compri- 
més et arrondis, presque lenticulaires chez l’'Oncidiuwm microchilum, presque 
globuleux chez l'Oncidium Harvrisonianum, costulés chez le Miltonia Russe- 


liana, etc. 


ne — 


desséchés des Chysis, des Cyrtopodium ressemblent à des bases de 
bambous. Des écailles verruqueuses se montrent parfois à la base 
des bulbes Trichosma. 

La surface des pseudo-bulbes est en général lisse : leur teinte 
est d’un vert cendré brillant, parfois un peu bronzé, rarement 
brune ou violette; velue chez l’Eriopsis, recouverte de verrues 
chez le Bulbophyllum lemniscatum. Nous avons vu que cette surface 
est surtout organisée en vue de résister à la dessication. Elle ne 
présente pas de stomates. 

Aériens ou souterrains, les pseudo-bulbes se conforment aux 
exigences du climat. Dans les pays où la plante a besoin de 
réserves nutritives abondantes, les pseudo-bulbes deviennent 
parfois énormes. Nous signalerons sous ce rapport ceux des 
Cyrtopodium du Peristeria elata qui ont la grosseur d’une tête 
d'enfant. Ceux de certains Schomburgkia sont aussi remarqua- 
bles; l’une des espèces doit son nom spécifique de Schomburgkia 
tibicinis (S. de la trompette) à cette particularité que, dans sa 
patrie, le Honduras, ses pseudo-bulbes creux, en forme de cornes, 
atteignant près de o"70 de longueur, sillonnés, côtelés, fistuleux, 
servent aux enfants de trompettes sonores. A côté de ces géants, 
nous observons des nains comme les pseudo-bulbes des Bulbo- 
Phyllum Odoardi (fig. 44, A) et minutissimum ; 
cette dernière espèce australienne, n’a que 
o®002 à o"oo3 de hauteur et o"oor de 
diamètre (fig. 44, B). 

Les pseudo-bulbes se produisant à inter- 
valles rapprochés forment des touffes. Ex. 
Schlimia trifida Rchb.{fig. 204). Chez le Den- 
drobium monoliforme, ils sont presque bout 


à bout, en chapelet; plus souvent encore ils Fig. 44. — A Bulbophyl- 
Sole À Fa Clotoné d lum OdoardiRcas.f.: 
sont isolés, même fort éloignés sur des :B pinutissimumE. 
rhizomes écailleux, comme dans les Cælo-  v:M:: c coupe longi- 
re L tudinale d’un pseudo- 
gyne elata et C. fuliginosa. Dans certains bulbe de ce dernier. 
Oncidium et Epidendrum, les pseudo-bulbes naissent le long du 
rhizome et donnent à la plante un aspect tout particulier. Les 
pseudo-bulbes successifs des Dendrobium donnent à son rhizome 
l’apparence d’une tige articulée, épaisse, érigée : D. crepidatum, 


pendante : D. aduncum, cylindrique : D.chrysanthum, présentant à 


chaque articulation un étranglement marqué : D. nobile. Ils 
dépassent parfois un mètre! 

Les pseudo-bulbes sont mono-, di- ou pluriphylles, la pré- 
sence d’une ou plusieurs feuilles ne constituant pas un carac- 
tère générique. En effet, dans le même genre, nous rencontrons 
des espèces à pseudo-bulbes monophylles : Laelia purpurata, 
Epidendrum auritum, Pholidota imbricata, Oncidium Forbestii: 
diphylles: Laelia Lindleyana, Epidendrum aurantiacum, Pholidota 
undulata, Oncidium concolor ; triphylles: Laelia grandiflora, Onci- 
dium filiforme, Epidendrum ionosmum ; pluriphylles : Epiden- 
drum bractescens, E. Barkeriola, etc. 

Parfois le nombre des feuilles diffère sur la même plante : tels 
sont les pseudo-bulbes mono- et triphylles de l’Oncidium flabelli- 
forme, mono- et biphylles des Laelia autumnalis, L. majals, etc. 

Dans quelques rares Orchidées, Calanthe, les pseudo-bulbes, 
divisés en morceaux et replantés, donnent naissance à de nou- 
velles plantes, tout comme les tubercules de pommes de terre. 

La plupart des Orchidées ont les feuilles disposées sur deux 
rangs ou comme on dit distiques. On y rencontre aussi des 
feuilles spiralées, plus fréquemment chez les Ophrydinées et les 
Néottiinées. Quelques espèces, Listera, Cypripedium javani- 
cum, etc., semblent avoir des feuilles opposées, tant l’entre- 
nœud compris entre elles reste court. Les Codonorchis seuls 
montrent des verticilles de 3-6 feuilles. Cette verticillation si 
exceptionnelle est-elle bien réelle, ou ne reproduit-elle pas le 
dispositif des Dioscorées à pseudo-verticilles ? 


GERAPEERES ENV. 


LA FEUILLE. 


I. FORME FONDAMENTALE DE LA FEUILLE. — La forme fon- 
damentale de la feuille des Orchidées nous paraît être une lame 
mince, s effilant en pointe au sommet, rétrécie vers le bas comme 
pour donner un pétiole, mais s’élargissant bientôt de nouveau 
pour former une gaine qui embrasse la tige. Des nervures, 
toutes de même calibre, courent parallèlement à la longueur du 
limbe; elles se terminent vers le haut de celui-ci en se jetant 
successivement sur la nervure voisine qui est immédiatement 
plus intérieure. 

Il n’y a pas de nervure médiane. 

L'opposition de la page supérieure et de la page inférieure du 
limbe est peu tranchée, 

Le pétiole n'est pas à proprement parler différencié. 

Cette forme fondamentale de la feuille qui est de beaucoup la 
plus fréquente chez les Monocotylédones, se retrouve dans toutes 
les séries d’'Orchidées monandres qui ne sont pas manifestement 
soumises à une adaptation spéciale; et là, elle présente soit 
l’allure d’un caractère archaïque qui s’est conservé, soit un 
retour vers une manière d’être plus ancienne, plus indifférente. 
On la retrouve plus fréquente chez les Cypripédinées. Les deux 
Apostasiées ont précisément des feuilles de cette sorte. 

Structure de la feuille type. — La structure de la feuille type 
est très simple : une assise épidermique supérieure, une assise 


— 72 — 


épidermique inférieure stomatifère avec stomates très simples 
du type liliacéen. Un parenchyme fondamental mal différencié, 
plus dense et plus chargé de matière verte à la face supérieure, 
plus lâche, plus méatique contre l’épiderme stomatifère. Des 
faisceaux de même valeur représentent chacun une nervure. 
Vers les marges du limbe, ces faisceaux décroissent en appro- 
chant du bord. Il peut y avoir différenciation des faisceaux en 
faisceaux plus gros correspondant à des nervures plus fortes, et 
faisceaux plus grêles correspondant à des nervures plus faibles. 

Ces feuilles ne sont pas articulées, c’est-à-dire que leur limbe 
ne se détache pas spontanément de la gaine. Même dans cette 
forme fondamentale de la feuille, on constate des réductions 
dans lesquelles le limbe s’atténue de plus en plus et ou finale- 
ment la feuille se réduit à sa portion engainante : c’est alors une 
écaille qui entoure la tige et qui reste intimement appliquée 
contre cette tige. 

Ces feuilles types peuvent avoir toutes les dimensions :.celles 
de certains Phajus atteignent jusqu’à o"65. Quand le limbe 
s'élargit un peu, il se plisse longitudinalement le long de cer- 
taines nervures. 

En règle générale, le feuillage des Orchidées n'est guère 
ornemental : quelques Orchidées font toutefois exception Ainsi, 
l'Eriopsis rutidobulbon Hook. (E. biloba Ldi.) possède de grandes 
feuilles vert clair, comparables à celles des Dracaena; les Den- 
drochilum sont en général garnis de feuilles étroites, ayant o"r5 
de longueur ; l'Aerides multiflorum (fig. 210) a de longues feuilles 
rubannées, solides, fort belles d'aspect; plusieurs Cypripedium 
ont leurs feuilles couvertes de mosaïques vert foncé et vert clair ou 
à fond vert tout maculé de blanc(fig. 205); le Calanthe veratrifolia, 
aux grandes feuilles ondulées et plissées, le Calanthe Masuca, aux 
jolies feuilles pubescentes à la page inférieure, peuvent rivaliser 
avec maintes plantes décoratives. Nous pourrions citer bien des 
exemples d'Orchidées dont le feuillage est gracieux : Epidendrum 
floribundum; où décoratif: les Sobralia dont les feuilles lancéolées, 
aiguës, plissées, coriaces, forment des touffes compactes de 
verdure quand la plante a acquis certain développement; les 
Arpophyllum et les Cymbidium, aux longues feuilles à nuance 
pâle; les Vandées, telles que le Vanda Balemanni, le Renanthera 


dé 


en — 
Lowi: Rchb., le Vaniller, tous les Phajus se distinguent par le 
caractère éminemment décoratif de leurs feuilles, etc. etc. 
Coloration des feuilles. — La coloration des feuilles des Orchi- 
dées est généralement un vert peu foncé mêlé de jaune; elles sont 
rarement tachetées, à la différence des Caladium, des Dieffen- 
bachia, des Begonia, et de tant d'autres plantes tropicales, culti- 
vées pour la beauté de leur feuillage. Quelques espèces font 
exception : on les appelle dans le langage horticole les Anaecto- 
chiles. Bien que ce nom botanique ne s'applique qu'à un seul 
genre, les horticulteurs l’appliquent à des genres différents qui 
ont tous ce caractère commun d’avoir des feuilles remarquables 
par leur coloration. Chez les Anaectochilus, le feuillage est bordé 
d’or, d’argent, d'émeraude ou de bronze. Le Dossinia marmorata 
(fig. 47) a ses feuilles d’un velours vert foncé délicatement nuancées 
de brun orangé, couvertes d’un réseau de veines jaune d’or foncé. 
Le Goodyera nous montre des feuilles vert foncé réticulées de vert 
pâle, ou de vert pourpre foncé, ayant une nervure médiane blanc 
d'argent. Dans les Physurus, les feuilles d’un vert brillant ou 
foncé tantôt sont couvertes 
d’un réseau argenté, et tantôt 
présentent des macules blan- 
ches. Les feuilles du Zewxine 
regia ont au centre un disque 
lilas pâle ou blanchâtre tran- 
chant d’une manière charmante 
sur les bords vert foncé. Les 
feuilles vertes des Haemaria ET Huemaria discolor Loi. 
sont traversées de bandes argen- var. Dawsoniana Ress. f. 
tées (fig. 45). Enfin le Macodes Petola a de belles feuilles vertes, 
traversées en tout sens par des lignes jaunes d’or. Quelques 
autres espèces se distinguent encore par leurs feuilles striées de 
blanc comme le Bletilla hyacinthina var. albo striata Rgl. ou tache- 


tées, comme le Phajus maculatus, l’Eulophidium maculatum, le 
Spiranthes Esmeralda, etc. Les feuilles du Nephelaphyllum 
pulchrum ont de curieux reflets métalliques. 


II. LA FEUILLE DES CYPRIPÉDINÉES. — Dans les Cypripédi- 
nées, nous constatons déjà quelques petites modifications de 


= st 
la forme fondamentale de la feuille. Le rétrécissement pétio- 
laire tend à s’effacer dans le Cypripedium arietinum (fig. 13, A) 
et plus encore dans le Paphiopedium concolor (fig. 13, c). Cette 
même espèce nous montre aussi le limbe devenant plus épais, 
surtout dans son plan médian. Dans ce plan médian, on remar- 
que un pli à la face antérieure et une crête correspondante à 
la face postérieure. De chaque côté de cette crête, les deux 
plages de la face inférieure des feuilles sont concaves; le bord 
du limbe tend même à se réfléchir sous la face inférieure. Cette 
même forme de la feuille est plus accusée dans le Paphiopedium 
longifolium (fig. 13, D), où le limbe garde une grande longueur et 
se termine très graduellement en pointe, alors que chez le 
Paphiopedium concolor, la feuille plus arrondie ne présente qu’une 
pointe fort courte. Signalons incidemment les barres transver- 
sales différemment teintées de la feuille de plusieurs espèces 
(P. Hookerae, Lawrenceanum, javanicum, marmorophyllum, ni- 
veum, etc.) et d'hybrides (P. Harrisianum (fig. 215), P. microchi- 
lum, etc.). 

Dans le Cypripedium japonicum (fig. 13, B), type des Cypripe- 
dinées diphylles, la plante présente, à la partie supérieure de sa 
pousse, deux grandes feuilles à région pétiolaire presque effacée, 
dont le limbe mince étalé en éventail est courbé en demi- 
cornet. Ce limbe est plissé longitudinalement. Ces deux grandes 
feuilles du C. japonicum sont insérées presque au même niveau; 
elles forment une sorte d'entonnoir, du fond duquel s’élance la 
hampe uniflore. Cette forme de feuille à limbe élargi dans sa 
partie supérieure et plissé sur le bord, est très rare. 


III. LA FEUILLE CHARNUE CHEZ LES ORCHIDÉES ACROTONES. 
— Dans les Orchidées monandres, la forme de la feuille présente 
naturellement de nombreuses variations; mais la nomenclature 
de toutes ces modifications ne dit rien à l’esprit, tant qu'on ne 
les relie pas entre elles par leur signification physiologique. 
C’est pourquoi, au lieu de donner une simple énumération de 
formes, nous allons montrer par quelques exemples la significa- 
tion physiologique des plus importantes de ces formes. 

Réduction de la région limbaire. — Chez un grand nombre 
d'Orchidées épiphytes, la feuille se transforme en vue de résister 


— 5 — 
à la sécheresse. Tout d’abord, la plante ne donne plus qu’un 
nombre très limité de feuilles pourvues de limbe; les autres sont 
réduites à leur région engainante ou passent même à l'état de 
simples écailles. Dans un état de différenciation plus avancée, la 
feuille épaissit son limbe et rétrécit sa largeur. En général alors, 
la feuille montre un pli médian sur sa face antérieure, une crête 
médiane postérieure saillante, deux plages supérieures convexes, 
symétriques par rapport au pli médian, et des plages inférieures 
concaves. Les bords du limbe se réfléchissent sur sa face infé- 
rieure. Telles sont les feuilles des Séelis (fig. 35,A), du Restrepia 
antenntfera (fig.35,G et 177), du Laelia furfuracea (fig. 33,A), etc. 
Un grand nombre d'Orchidées cultivées dans nos serres n’ont plus 
qu'une ou deux de ces feuilles qui, à première vue, frappent 
surtout par leur carnosité plus prononcée. Les marges du limbe 
se réduisant, la côte médiane conservant d’autre part son épais- 
seur, la feuille devient une baguette épaisse, à peine élargie 
latéralement entre la gaine et son extrémité. Les feuilles du 
Brassavola Perriniti (fig. 33, D) peuvent nous servir d'exemple. Si 
les marges du limbe disparaissent tout à fait, nous avons des 
feuilles cylindriques, qui ne conservent plus comme trace de leur 
état premier qu’un sillon marquant leur arête supérieure. Le joli 
petit Masdevallia triaristella (fig. 34), que nous avons déjà cité 
à propos des Orchidées muscoïdes (page 50), et l'Oncidium Cebol- 
leta (fig. 46, Fr), nous montrent des feuilles de cette sorte. Enfin 
la dernière trace du pli médian de ces feuilles épaisses dispa- 
raît, et nous avons des feuilles à section transversale presque 
circulaire, qu’on ne peut orienter qu'en se répérant sur l’ensem- 
ble des faisceaux. Telles sont les feuilles de l'Aerides Vandarum, 
du Scuticaria Steelei (fig. 32) et mieux encore celles du Vanda 
Hookeriana (fig. 52). Près de ces feuilles, il faut ranger les 
feuilles d'Orchidées à port d’Iris : Oberonia iridifolia, O. acaulis, 
Maxillaria iridifolia (fig. 24, Fr), etc. Chez l'Oberonia acaulis 
(fig. 23, F), la section transversale de la feuille est un triangle 
isocèle à base très étroite, un peu concave, marquant la face 
antérieure déprimée. La section transversale de la feuille de 
l'Oberonia iridifolia (fig. 23, E) est une ellipse fortement excen- 
trique, dont le grand diamètre est dirigé d'avant en arrière. 

On rencontre parfois toutes ces formes de feuilles grasses dans 


un même genre. Dans le genre Oncidium par exemple, nous 
trouvons une feuille déjà épaissie chez l’Oncidium Papilio(fig.55). 
Elle a encore des marges nettes, mais très rétrécies dans l’Onci- 
dium Cavendishianum (fig. 46, A). La feuille est devenue étroite, 
triquètre chez l'Oncidium triquetrum (fig. 46,c,D). Elle n’a plus de 
marges, mais possède encore une face antérieure, plane ou con- 
cave, chez l'Oncidium siluestre (fig. 46, E). Enfin, les feuilles sont 


Se Ir 


Fig. 46. — À Oncidium Cavendishianum BAT.; B coupe transversale d’une feuille; 
c O. triquetvrum Loi.; D coupe transversale du limbe foliaire; E O. siivestre Lor.; 
F O. Cebolleta Sw.; & coupe de la feuille; x Rodriguezia decora Roux. f.; j Tonopsts 
baniculata Loz.; k Notylia bicolor Lo. 
cylindriques avec sillon médian antérieur dans l’Oncidium Cebol- 
leta (fig. 46, Fr). Cette réduction de la surface du limbe foliaire 
aboutissant à la feuille centrique, la carnosité, et en même temps, 
la réduction de l’appareil radical de la plante, sont des procédés 
généraux que nous savons être employés par les Dicotylédones 
pour s’adapter aux stations les plus sèches. Il se produit là une 
forme de plante dont les harmonies organiques ont des analogies 
avec celles des plantes grasses. Ces faits sont à rapprocher de 
ceux que nous montrent les Vanilles (fig. 201) ou Orchidées en 
lianes. Leur feuille est peu modifiée bien que cependant déjà plus 
courte, plus épaisse, avec tendance à un pli médian. La résistance 


A — 
à la sécheresse se fait dans la liane par l’élongation des entre- 
nœuds. Nous voyons donc chez les Orchidées la confirmation des 
idées exposées par J. Vesque dans ses belles recherches sur /a 
Structure du bois et sur l'Emploi de la feuille pour définir les 
groupes spécifiques. 

Structure des feuilles charnues. — Dans les feuilles épaisses 
des Orchidées épiphytes, nous trouvons des mucilages, des 
acides organiques libres et, en abondance, des glandes à oxalate 
calcique. Nous avons déjà signalé ces mucilages et ces acides 
organiques dans les tubercules aquifères ; c’est à ces substances 
qu'ils doivent de pouvoir remplir le rôle de révervoirs d’eau. 
Nous comprenons dès lors que les feuilles des Orchidées 
épiphytes jouent dans une certaine mesure, le même rôle de 
réservoir d’eau, et par suite qu'il s'établisse une sorte de 
balancement entre le développement relatif des feuilles et les 
tubercules aquifères. Mais ce n’est là qu'une tendance, il ne 
faudrait pas y voir une loi; trop de causes secondaires en 
modifient l’expression au point de la rendre méconnaissable. 
Tout naturellement, comme conséquence de cette fonction 
spéciale, nous voyons les Orchidées épiphytes avoir souvent des 
feuilles articulées. Lorsque la période sèche arrive, le limbe 
se sépare de la gaine par une mince lame de liège qui l'isole 
et le fait tomber; la plante traverse une période de repos. A 
l'inverse par conséquent des autres Monocotylédonées, les Orchi- 
dées ont fréquemment des feuilles articulées; mais la caducité de 
la feuille n'y a même pas la valeur d’un caractère générique. 

Dans ces feuilles à limbe épaissi des Orchidées épiphytes, la 
surface supérieure apparaît comme vernissée; elle n’a pas de 
stomates, ceux-ci sont complètement localisés sur la face infé- 
rieure. Sous l'épiderme supérieur se développe une couche de 
tissu incolore, gorgé d’eau et d’acides organiques, avec parois 
souvent striées, de manière à provoquer une dispersion de la 
lumière : Cælogyne flaccida, Scaphosepalum (Masdevallia) verruco- 
sum. Contre ce tissu vient s’appliquer le parenchyme chlorophyl- 
lien dont la richesse en matière verte est extrêmement variable. 
Chez beaucoup d'Orchidées la chlorophylle est en très gros 
grains, peu abondante, ce qui explique leur coloration spéciale. 

La principale modification de la structure de la feuille charnue 


porte sur l'agencement de ses faisceaux. Un certain nombre de 
ceux-ci se rapprochent du plan de symétrie de la feuille, et se 
disposent sur une ou plusieurs courbes excentriques élargies en 
arrière, rétrécies vers la face antérieure. Ces faisceaux sont 
même différenciés en gros et petits faisceaux, les petits faisceaux 
alternant avec les gros et étant un peu plus externes que ceux-ci. 
Malgré ce dispositif, chaque faisceau devient successivement 
faisceau marginal, et quand il est très affaibli, s’éteint librement 
ou se jette sur un faisceau voisin. 

Dans les feuilles, la marge du limbe a totalement disparu; en 
particulier dans les feuilles centriques du Scuticaria, les stomates 
sont localisés en files longitudinales, enfoncés au-dessous de 
la surface; le tissu chlorophyllien tapisse l’assise sous épider- 
mique sur tout le pourtour de la feuille. Tous les faisceaux sont 
placés sur des courbes excentriques. Dans le parenchyme des 
feuilles épaissies, on trouve des éléments de soutien à parois 
épaissies remarquables par leurs ornementations spiralées. Ce 
n’est pas là d’ailleurs un caractère déterminatif puisqu'on le 
retrouve ailleurs, chez les Crinum, par exemple (1). 


IV. LA FEUILLE CLIVIOÏiDE. — Dans les Macroplectrum (fig. 18), 
les Angraecum (fig. 110, 208), les Saccolabium (fig. 206) et la 
plupart des Aerides (fig. 210), la région pétiolaire de la feuille 
disparaît; le limbe conserve la même largeur de la base au 
sommet, et celui-ci, au lieu de montrer une pointe plus ou moins 
saillante, présente surtout chez les Angraecum et le Macroplec- 
trum, un sinus dont les deux côtés sont asymétriques. Cette petite 
dépression du sommet de la feuille est presque la seule trace 
d'incision que présente la feuille des Orchidées. Ces feuilles 
d'Angraecum, souvent très longues — 0"56 sur o"o5 de largeur, 
— sont surtout intéressantes par leur teinte vert foncé et leur 
ressemblance avec les feuilles de Liliacées. Sans sortir du genre 
Angraecum, on trouverait des passages entre ces feuilles lilii- 
formes et les feuilles charnues. Ainsi l’Angraecum fastuosum 


(1) Comme autres exemples de feuilles centriques, nous citerons Aerides 
Scottianum, À. Vandarum, Oncidium amesianum, Vanda teres, Dendrobium 
teretifolium, Saccolabium gemminatum. 


- 


(fig. 208), a des feuilles ovales-oblongues épaissies et l’Angraecum 
subulatum des feuilles nettement charnues. 


V. LES LIMBES CORDIFORMES OU AROÏDES. — La grande feuille 
que porte la pousse du Nervilia Gammieana (fig. 30) et celle du 
Corysanthes picta (fig. 31) méritent une mention particulière. On 
ne les retrouve pas en dehors de la petite tribu des Pogoniées. 
Dans ces feuilles, le limbe mince est élargi en cœur échancré 
à la base. De l’échancrure basilaire part une côte médiane 
correspondant à une dépression sur la face antérieure, et à une 
crête saillante sur la face postérieure. A partir de ce point, 
les deux feuilles diffèrent. Chez le Nervilia, un certain nombre 
de nervures latérales partent de la base du limbe, et divergent 
en éventail en gagnant le bord de celui-ci. A chacune d’elles 
correspond un pli semblable à celui qui court le long de la 
nervure médiane. Les nervures transversales, qui relient les 
nervures latérales entre elles et avec la nervure médiane, ne sont 
pas immédiatement visibles. Des maculatures en forme de gros 
points ornent chacun des segments du limbe sur les deux 
versants de chaque pli. Ces maculatures grandissent de la base 
au bord du limbe. L'aspect de cette feuille est exceptionnel chez 
les Orchidées; il rappelle plutôt, comme nous l’avons indiqué, 
certaines Aroïdées. — Dans le Corysanthes picta, le caractère de 
la feuille est tout autre, par suite du dispositif des nervures. 
Deux ou trois grosses nervures latérales partent de la base du 
limbe et décrivent une courbe plus ou moins convexe pour gagner 
le bord du limbe et son sommet : on dirait une foliole de Dioscorea 
jeune. La ressemblance est encore accentuée par de grosses 
nervures secondaires s'étendant transversalement, mais peu régu- 
lièrement, entre la nervure principale et les nervures latérales, 
ainsi qu'entre les nervures latérales voisines. La nervation prend 
ainsi une apparence réticulée. 


VI. LA NERVATION RÉTICULÉE DES ANŒCTOCHILES ET LEUR 
COLORATION. — L'apparence de nervation réticulée se retrouve 
d’ailleurs dans des feuilles qui sont demeurées très voisines de 
la forme fondamentale. Chez les Anœctochiles, le Dossinia mar- 
morata (fig. 47), l'Haemaria discolor, var. Dawsoniana (Gg. 45), la 


Ro — 


feuille ne diffère de la forme fondamentale que par la largeur relati- 
vement grande de son limbe, eu égard à sa faible longueur. Cinq, 
sept, neuf nervures de même force partent de la base du limbe et 
gagnent le sommet, la médiane 
directement, les autres en s'in- 
curvant de plus en plus vers 
l’extérieur; les dernières plus 
grêles servent de nervures 
marginales. Ces premières ner- 
vures plus fortes sont reliées 
entre elles par des nervures 
transversales bien rectilignes, 
parallèles entre elles, dispo- 
sées comme des échelons. 
Lorsque le fond de la feuille 
étant vert foncé, les nervures 
sont indiquées en teintes plus 
claires, on croit voir de petites 
Mélastomacées. On sait com- 
bien il est peu fréquent de voir 
les feuilles d'Orchidées présen- 


£ és ds ter de vives couleurs. Les 
ig.47.— A Dossinta marmorata Morr.; : : ; 
B fleur (coupe); c fleur de Goodyera Anoectochiles font exception : 
BL.; D fleur de Macodes petola BL; 
E fleur d'Anoectochilus Reinwardtit ; “R se 
BL.; F pollinarium. lées, marbrées, striées, réticu- 


leurs feuilles veloutées, macu- 


lées d’or et d'argent, merveilleuses créations d’une nature exubé- 
rante, rivalisent avec les soieries les plus chatoyantes, avec les 
éblouissants tissus dûs au génie et à la patience des Orientaux. 
Rien de plus surprenant comme dessin que les feuilles du groupe 
horticole des Anectochiles : Anoectochilus argyroneurus, Frederici- 
Augusti, regalis et var., Roxburgii, Ruckheri, setaceus, Turneri, 
zebrinus ; Argyrorchis javanica; Haemeria discolor var. Dawso- 
niana, Rollisonti; Goodyera macrantha et var., Dossinia marmorata, 
Macodes Petola, Physurus argenteus, pictus, Zeuxine regium, etc. 


VII. LES FEUILLES DES ORcHIS. — Bien que très remar- 
quable aux yeux du botaniste herborisant, la feuille de nos 
Orchis, des Aceras (fig. 49) et des espèces voisines est peu 


[A 4 = L œ 
DE & D C D a 
a \ = © DE = 
_— —- 17/9000 IN L 


a — 


différenciée des feuilles précédemment étudiées. La région engai- 
nante est relativement longue. Il n’y a pas de rétrécissement 
pétiolaire. Le limbe épais a la même largeur dans toute sa lon- 
gueur; son sommet est arrondi; il est concave en dessus, convexe 
en dessous, sans côte médiane; ses nervures, enfouies dans le 
parenchyme, ne sont pas visibles sur les faces du limbe, Il y a 
des stomates sur les deux faces de la feuille. La feuille n’est 
pas articulée. La teinte de la feuille est vert clair. Certaines 
espèces, comme l’Orchis maculata, l'Orchis latifolia, sont tachetées 
de brun. 


VIII. AUTRE FORME SPÉCIALE DE FEUILLES. — Dans les 
Orchidées non vertes, les feuilles se réduisent à de petites 
écailles incolores, charnues, qui font même défaut sur les 
rhizomes coralloïdes de l’Epipogon (fig. 38). 


IX. VERNATION DES FEUILLES. — La vernation des feuilles, 
c'est-à-dire la manière dont elles sont pliées et agencées dans 
le bourgeon, a été employée par Pfitzer pour établir les coupes 
de sa classification qui sont immédiatement subordonnées à 
celles qu'il a tirées des rhizomes. Ainsi, après avoir distingué 
les Orchidées monandres acrotones, en plantes à sympodes acran- 
thes et plantes à sympodes pleuranthes, Pftzer distingue dans 
chaque groupe, les Orchidées à 
préfoliation condupliquée et les 
Orchidées à préfoliation convo- 
lutée. Dans le bourgeon, en effet, 
la feuille est : ou bien pliée en 
long sur sa côte médiane, de 
façon à rapprocher les deux 
moitiés de sa surface supérieure 
(préfoliation condupliquée ou dupli- 
cative) (&g- 48); — ou bien l’une Fig. 48. — À, 8 préfoliation condu- 
des deux moitiés du limbe, exté- pliquée. 
rieure par rapport à l’autre, est enroulée autour d'elle, celle-ci 
étant elle-même enroulée à l'intérieur de la première. Cette 
seconde préfoliation est dite convolutée ou convolutive (fig. 485). 
Dans cette préfoliation convolutive, l’un des bords du limbe se 
trouve donc extérieur, l’autre intérieur. 


yo lee 


Dans l’un et l’autre mode de vernation, chaque feuille em- 
brasse complètement la suivante; elle est comme à cheval sur 
elle, ce que les botanistes appellent équitante. Quand les jeunes 
feuilles doivent devenir particulièrement larges comme dans les 
Sobralinées, les 
Phajinées, le limbe 
de la jeune feuille 
encore enfermée 
dans le bourgeon 
est lui même très 
large; il se plisse 


en long. Aux ré- 
gions saillantes de 


Fig. 48bis. — c, D préfoliation convolutée. ces plis correspond 
un épaississement de la feuille formant saillie au dehors. Dans 
cet épaississement chemine un faisceau plus volumineux. 

Pour les deux modes de préfoliation, comme pour les deux 
modes de constitution de sympodes, se pose la question de savoir 
si Pfitzer n’a pas exagéré leur valeur au point de vue de la clas- 
sification. Il est certain que ces deux formes de préfoliation ont 
une très grande généralité, mais s'agit-il là d’un caractère se 
répétant dans des séries divergentes, ayant par conséquent peu 
de valeur comme indication de filiation, ou bien la différenciation 
florale s'est-elle faite postérieurement à la fixation du mode de 
préfoliation? Sans oser rien affirmer, nous pensons que dans 
des types à fleurs aussi différenciées que celles des Orchidées, 
les caractères spéciaux de la fleur sont de meilleurs indicateurs 
de la filiation que la préfoliation. Loin de nous la pensée de 
vouloir nous permettre une critique que notre rôle fort modeste 
d’amateur d’Orchidées ne nous permet pas; mais il y a si peu 
de différence entre les deux formes extrêmes de préfoliation que 
l'emploi de ce caractère ne laisse pas d’être très délicat (1). Cela 
montre incidemment combien la classification naturelle des 
Orchidées est difficile à établir. 


(x) Sans sortir des Cypripédinées, nous rencontrons la préfoliation convo- 
lutée chez les Cypripedium et les Selenipedium, et une préfoliation condupliquée 
chez les Paphiopedium, genres que les Orchidophiles confondent entre eux. 


CHAPITRE VI. 


LES RACINES. 


I. RÉDUCTION RELATIVE DE L'APPAREIL RADICAL DES ORCHI- 
DÉES. RESSEMBLANCES PHYSIOLOGIQUES DES ORCHIDÉES AVEC 
LES PLANTES GRASSES. — [appareil radical des Orchidées est 
toujours extrêmement réduit, quelles que soient les conditions 
dans lesquelles vit la plante. Qu'il se rencontre dans le sol des 
prairies humides, dans le terreau des forêts sombres, sur la sur- 
face des arbres ou à l'état de liane, le système des racines est 
hors de proportion avec l’ensemble des autres organes, feuilles 
et fleurs, ou du moins ne répond pas à l’idée que nous nous en 
faisons chez les autres végétaux. Les racines, chez la plupart des 
Orchidées, semblent n’avoir d’autre but que de retenir la plante 
au tronc lui servant d’appui, et d'empêcher les fleurs de s’élever, 
brillants papillons, dans l’immensité de l’espace. Éloignées des 
feuilles et des racines, les fleurs paraissent isolées dans la brise 
qui les balance. Leurs éclatantes inflorescences dépourvues de 
feuilles rappellent la légende des oiseaux de paradis, les Para- 
disea apoda et Cicinnurus regius, qui, disaient nos pères, vivaient 
de l’air dans lequel ils volaient sans jamais se reposer. Si nous 
établissions une proportion entre le développement de l’appareil 
radical d'un Cattleya et ses fleurs, et que, d’autre part, tenant 
compte de l’appareil radical du Rosier, nous voulions avec ce 
rapport calculer les dimensions de la Rose, nous verrions que 


cette fleur devrait atteindre les dimensions d’une roue de voiture, 
om7o de diamètre !! 


— 


Cette réduction de l'appareil radical des Orchidées a pour 
conséquence immédiate la réduction de la poussée radiculaire 
qui soulève l'eau dans la plante. C’est, on le sait encore, un 
des modes que les végétaux emploient pour résister à la séche- 
resse. Les Crassulacées, les Cactées, les Euphorbes grasses 
nous montrent à son maximum d'intensité cette manière de 
ralentir le mouvement de l’eau dans la plante. Chez les Orchi- 
dées, cette réduction de l’appareil radical a presque la valeur 
d'un caractère familial : il est absolument général. 

Absence de parasitisme chez les Orchidées. — Même dans ces 
Orchidées décolorées et privées de racines, on ne constate pas de 
véritable parasitisme (1). La plante ne tire pas d’une autre plante 
vivante l’eau et les matières organiques dont elle a besoin. L’Or- 
chidée semble cependant avoir besoin dans son alimentation de 
trouver des matières organiques toutes constituées, toutes faites; 
mais celles qui proviennent de la décomposition lente des végétaux 
morts, en particulier les dérivés ulmiques, semblent lui suffire (2). 


II. LES RACINES DU LISTERA OVATA. — Employant toujours 
la même méthode objective qui nous permet de montrer, sur des 
exemples bien connus, les faits dont nous voulons parler, nous 
prendrons comme premier exemple l'appareil radical du Listera 
ovala (fig. 42). 

Forme et structure. — Le rhizome souterrain du Listera nous 
présente d’assez nombreuses racines, toutes adventives, insérées 
principalement à sa face inférieure, mais sans ordre simple. 
Toutes ces racines sont semblables, non ramifiées, régulière- 
ment cylindriques dans toute leur longueur, sans poils radi- 
caux. Une pilorhize ou coiffe subéreuse protège leur extrémité 
antérieure. L’unique faisceau de chaque racine est de moyen 
calibre, plutôt grêle que large, avec un nombre relativement peu 
élevé de lames ligneuses convergentes jusqu’au centre de la 


(1) Il faudrait peut-être faire une exception pour le genre Pogoniopsis Rchb. f. 

(2) C’est en effet presque toujours dans des terrains riches en substances 
ulmiques qu’on trouve les Orchidées; c’est même exclusivement dans le 
terreau qu’on trouve Epipogon, Corallorhiza, Neottia Nidus-avis, bien que cette 
dernière vive aussi dans un sol argileux. 


racine. La région profonde des tissus dits corticaux ne montre 
pas une sériation radiale nette. 

Mycorhizes. — À la périphérie de la racine, on trouve toujours 
la région des tissus dits corticaux envahie par un champignon 
très inférieur, qui vit en symbiose dans ces racines, assimilant 
pour le Listera, par contre étant nourri par celui-ci(x). L’en- 
semble de la racine et du champignon est un organisme complexe 
que les botanistes appellent un Mycorhize. 

Le Listera ne paraît nullement souffrir de son hôte. Les 
noyaux cellulaires sont tous remarquables par leur grand volume. 
A part la structure du faisceau, la ressemblance de ces racines 
avec celles des Ophioglossum, des Botrychium, est surprenante: 
on sait que celles-ci sont également le siège de Mycorhizes 
et que les noyaux cellulaires de leur tissu cortical sont aussi 
très volumineux. 

De même encore que ces Ophioglossées, lorsque la pointe par 
laquelle la racine s’allonge vient à être brisée ou arrêtée dans 
son développement, il peut se former un point de végétation 
adventif qui fournit une nouvelle plante. C’est un moyen usité 
pour multiplier certains genres d'Orchidées rares. 

Il existe également une grande ressemblance entre les racines 
des Orchidées et celles des Lycopodiées. 

Toutes les Orchidées à rhizome souterrain présentent des 
racines semblables à celles du Listera ovata, ou n’en diffèrant que 
par le calibre. 

Dans l’Aplectrum hyemale Nutt., la racine est épaisse et globu- 
leuse, formant une sorte de bulbe solide, affleurant au sol et 
gorgé d’une matière glutineuse : elle fait songer aux pseudo- 
bulbes des Orchidées épiphytes. 

Dans le Neottia Nidus-avis, Orchidée de nos pays, très pauvre 
en chlorophylle et dont la teinte générale est rousse, les racines 
sont particulièrement nombreuses, entremêlées entre elles et 


(r) Le Champignon du Listera ovata n’a pas été déterminé spécifiquement. 
Chez les Vanda suavis, V. tricolor, Platanthera bifolia, Orchis mascula, Wahl- 
rich, Mollberg et Vuillemin ont reconnu que ces Mycorhizes produisent 
des fruits de Champignons Ascomycètes qu'ils ont pu rapporter au genre 
Nectria. D'après Johow, le Wullschlaegelia est la seule Orchidée où il n’ait pas 
trouvé de Mycorhize. 


7 


avec les branches du rhizome; de là une masse que l’on a com- 


parée à un nid d’oiseau et que, dans une certaine physiologie, 
plus sentimentale qu’expérimentale, on considère comme dis- 
posée pour recevoir et conserver l'eau de pluie. 

Si nous descendons encore plus bas que ce Neottia, nous 


Fig.49.— Aceras anthropophora R. Br. 


trouvons des Orchidées plus pro- 
fondément humicoles, où les 
racines disparaissent et font abso- 
lument défaut pendant toute la 
vie de la plante; telles sont les 
Orchidées à rhizome coralloïde : 
Epipogon (fig. 37), Corallorhiza. 

Dans ces plantes, le rhizome 
joue le rôle d’organe absorbant, 
rempli chez les autres plantes par 


les racines. La surface du rhizome 


est couverte de poils absorbants 
et leurs tissus superficiels sont 
bourrés de Champignons. 


III. APPAREIL RADICAL DE 
L'ORCHIS MILITARIS. — Prenons 
comme second type d’appareil 
radical, celui de l’Orchis mili- 
taris ou celui de l’Aceras anthro- 
bophora (fig. 49). Cet appareil est 
tout entier souterrain et même 
assez profondément enfoui dans 
la terre argileuse. Il se compose 
de deux parties bien tranchées : 
1° des racines velues, cylindriques 
non rameuses, identiques à leur re- 
vêtement près à celles du Listera, 
2° deux gros tubercules dont nous 
avons déjà parlé. Les racines 
grêles sont insérées en cercle sur 
la partie basilaire de la tige- 


hampe. Quant aux deux tubercules, ils sont insérés le premier 


directement au dessous de la tige-hampe, le second sous un 
bourgeon axillaire invaginé dans un pédoncule creux qui le 
porte plus ou moins loin de la plante souche. Chez l’Herminium 
monorchis, la longueur de ce pédoncule est telle qu’on a parfois 
douté des rapports du nouveau tubercule avec la plante mère. 
Le premier tubercule est, comme nous l'avons dit, flétri, épuisé 
par la production de la pousse feuillée de l’année, l'autre est 
en voie de formation; son bourgeon développera la pousse de 
l’année suivante. 

Les cladodes de racines ou tubercules souterrains. — Les tuber- 
cules de l’Aceras sont des touffes de racines concrescentes entre 
elles, l’une d'elles étant parfois plus importante que les autres et 
se prolongeant en une pointe à la partie inférieure du tubercule(1). 
Ces racines sont directement insérées sous un bourgeon axillaire. 
La tubérisation de ces racines est déterminée par le grand déve- 
loppement de la région profonde de leur parenchyme cortical. Le 
faisceau y reste relativement grêle, avec un très petit nombre de 
lames ligneuses primaires convergentes, deux, trois, quatre 
lames par exemple. La réserve nutritive est formée de matières 
amylacées, de mucilage et d’eau. La principale variante de cet 
appareil radical consiste dans l'indépendance plus ou moins 
grande des racines coalescentes qui forment les tubercules. La 
forme parfaite est celle où toutes les racines sont complètement 
concrescentes et où le tubercule forme ces ovoïdes parfaits qui 
ont mérité aux Orchis leur nom. 

Les tubercules digités. — Il existe toute une série de transi- 
tions entre les tubercules indivis des Orchis et ceux où chacune 
des racines concrescentes conserve son sommet indépendant, de 
telle sorte que le tubercule se prolonge par un certain nombre 
de racines semblables aux racines ordinaires (2). Nous trouvons 
un tubercule ovoïde entier dans Orchis fusca, O. militaris, 
O. ustulata, O. coriophora, O. globosa, O. Morio, O. pallens, 


(x) Aucune d'elles ne prolonge le tubercule dans notre exemple. 

(2) Dans les tubercules digités, le nombre des racines concrescentes peut 
s'élever beaucoup. Les faisceaux des racines sont plus volumineux; ils ont un 
bien plus grand nombre de lames ligneuses. Le Spiranthes autumnalis, qui 
présente le mieux cette disposition, paraît avoir un bouquet de tubercules 
fusiformes sous la tige. 


MORE 


O. mascula, O. laxiflora, Anacamptis pyramidalis, Aceras anthro- 
pophora ; et des tubercules digités ou palmés dans Orchis Sam- 
bucina, O. maculata, O. lahifolia, O. incarnata, Gymnadenia 
coneopsea, Peristylis ou Satyrium. C’est par ces tubercules digités 
que l’appareil radical du type Orchis se relie à l'appareil radical 
du type Listera : des racines toutes semblables partant de la 
base de la tige hampe comme dans la petite Calypso borealis 
(fig. 209), des régions polaires, se lisent aussi bien appareil 


Fig. 50.— À Microstylis discolor Loz., facies et port; 8 fleur 
de Microstylis versicolor; © Cestichis pendula (Lot) 
Pr1rz., port: D fleur; E gynostème; F pollinie de Micro- 
stylis ; & pollinie de Cestorchis. 


radical d’un type à tubercules radicaux non différenciés que 
appareil radical d'un type à rhizome souterrain réduit à son 
bourgeon terminal (1). 

Les tubercules de nos Orchis indigènes sont donc des organes 
complexes. Quand on veut mettre cette propriété en relief, on dit 
que ce sont des fasciations de racines ou des cladodes de racines, 


(1) Les racines de Calypso borealis sont remarquables par la villosité de 
leur surface. 


— 89 — 


- # L4 - - - 
insérés sous un bourgeon axillaire. Les Mycorhizes sont extrême- 
ment abondants dans les racines ordinaires du type Orchis. 


IV. ORCHIDÉES A RHIZOME RAMPANT SUR LE sOL. — Le 
Chrysoglossum villosum (fig. 5 1), le Xylobium pallidiflorum (fig. 7, À) 
nous montrent un type d'appareil radical différant peu de celui 
du Läistera. Il est plus localisé sur le rhizome. Ce qu'il y a 
d’intéressant dans cette nouvelle manière d’être, c’est que, dans 
d’autres plantes, nous le voyons presque sans changement de 
forme s'adapter à des conditions de 
vie toutes différentes. Dans le Chry- 
soglossum villosum, le rhizome n'est 
plus souterrain; il court à la surface 
du sol; ses racines sont localisées à 
la face inférieure du rhizome, sur- 
tout près des régions nodales. Ces 
racines plongent dans le sol; elles 
ont identiquement le facies et la 
structure des racines de Listera. 
Dans le Caælogyne Cumingir, les 
racines se localisent davantage et 
naissent sous la base même des par- 
ties redressées de la tige, c’est à dire 
immédiatement sous ce qui paraît 
être la pousse feuillée. 


Rhizomes épiphytes : leurs racines Fig. 51. — Chrysoglossum villo- 
sum BL. 


aériennes. — Si, au lieu de prendre 
une Orchidée rampant sur le sol comme ces premiers exemples, 
nous choisissons des Orchidées épiphytes, c'est-à-dire fixées sur 
l'écorce d'arbres eux-mêmes en pleine vie, comme Scuticaria 
Steelei (fig. 32), Chysis bractescens (fig. 162), Cirrhopetalum Cumin- 
gt (&g. 52, F), nous trouvons les mêmes faits de localisation des 
racines sur la face du rhizome contiguë au support, de préfé- 
rence aux régions nodales, voire même exclusivement sous les 
futures pousses feuillées, comme dans le Chysis et le Cirrho- 
petalum. Mais les racines ne s’enfoncent pas dans la plante 
support; elles courent à la surface de l'écorce, se cachant dans 
les anfractuosités du rhytidome crevassé, ou même elles pendent 


— 90 — 


librement dans l’air. Si fréquentes chez le plus grand nombre 
de nos plus belles Orchidées de serre que nous en arrivons 
à leur donner la valeur d’un caractère familial, ces racines 
aériennes sont encore cylindriques, non rameuses, mais leur 
surface est blanche, mate ou argentée, comme si ses tissus 
superficiels contenaient de l’air. L'extrémité libre de ces racines 
est translucide. On y reconnaît un point de végétation en pleine 
activité, recouvert d'une pilorhize. L'ablation ou la mutilation 


Fig. 52. — À Bulbophyllum Lobbii Lor.: 8 B. Careyanum Loz., racème basi- 
laire; c coupe longitudinale de la fleur; D B. cylindraceum Loz.; E B. reticulatum 
Loz., port; F Cirrhopetalum Cumingii Lor.; G fleur aggrandie après enlèvement 
du sépale médian. 


de cette extrémité de la racine arrête définitivement son élonga- 
tion. Elle provoque souvent la formation d’une racine adventive 
qui se place dans le prolongement de celle qui lui a donné 
naissance. Dans certaines espèces de Phalaenopsis (fig. 39 et 54) 
elle provoque même l’apparition d’un bourgeon adventif qui 
fournit un nouveau pied (1). 


(1) Ces bourgeons adventifs se produisent fréquemment sur les racines 


Extérieurement, la différence des racines aériennes et des 
racines souterraines est donc assez faible : c’est surtout sur la 
coloration qu’elle porte. La structure est plus profondément 
modifiée chez le Catileya citrina (fig. 234). Immédiatement 
sous l’assise superficielle de la racine, qui porte ordinairement 
les poils radicaux, on trouve, au lieu d’une assise de cellules 
hypertrophiées (Assise épidermoïdale, Chatrin — Assise subé- 
reuse, Van Tieghem), une couche épaisse de tissu subéreux, ou 
liège. Ce liège a une organisation spéciale; ses parois cellulaires 
sont minces, blanches, brillantes et couvertes d’épaississements 
en hélice d’une finesse extrême, très 
nombreux et très serrés, couvrant 
presque toute la surface de la paroi. 
Le contenu protoplasmique de ces 
cellules disparaît très rapidement et 
la cellule est pleine d'air. Ce liège 
immobilise une couche d’air autour 
de la racine, en même temps que ses 
réticulations provoquent une diffusion 


à x : x Fig. 53. — Coupe horizontale 
tres complète de la lumière. I1 semble : ne de Déndrobium 
donc que ce liège aérifère des racines  #0bile (d'après Strassbruger). 


aériennes des Orchidées, ce velamen, comme on l’appelle dans 
la langue descriptive, soit un organe protecteur de la racine 
contre un excès de transpiration ou contre un excès d’éclaire- 
ment. Sous ce liège aérifère, la racine présente une couche de 
cellules hypertrophiées souvent sclérifiées, c'est-à-dire à parois 
épaissies; c'est une nouvelle assise épidermoïdale remplaçant 
celle qui a produit le liège aérifère. La région profonde du 
parenchyme cortical des racines aériennes est très développée. 
Comme dans les racines souterraines, la disposition de ses 
cellules en files radicales et tangentielles n’est pas reconnais- 


d’'Orchidées tenues sous châssis humide et chaud : Zygopetalum Mackayi, 
Odontoglossum cordatum, Paphiopedium niveum, concolor, etc. ou sur les racines 
mutilées : Phalaenopsis Schilleriana, Ph. amabilis, Ph. Stuartiana, Ph. Lude- 
manniana, etc. Angraecum Leonis, Cyrtopodium, Saccolabium, etc. etc. Les 
jardiniers trouveront dans cette observation l'indication d'un mode de repro- 
duction qui n’a pas été encore suffisamment apprécié. Le Neottia Nidus-avis 
présente également des racines prolifères. 


sable, sinon dans le voisinage immédiat du point de végétation. 
La ressemblance de ce tissu dans les deux sortes de racines 
est donc conservée, mais très souvent ces cellules montrent sur 
leurs parois de gros épaississements réticulés ou en hélice, qui 
dessinent des cadres variés sur la paroi. Au fond, ces épaissis- 
sements diffèrent peu de ceux du liège aérifère. 

La gaine casparyenne — l’endoderme de Van Tieghem — 
c’est-à-dire la dernière assise des tissus corticaux de la racine, 
a ses parois fortement épaissies, sauf quelquefois devant les 
pôles des lames ligneuses. Le faisceau de ces racines aériennes 
est plus large que celui des racines souterraines : ses lames 
ligneuses ne convergent pas au centre de figure, et tout ce qui 
n’est pas différencié dans le faisceau en éléments grillagés et en 
vaisseaux ligneux se sclérifie. Naturellement d’une espèce à 
l’autre, la sclérification est plus ou moins rapide. Le parenchyme 
cortical de toutes ces racines aériennes est rempli de champi- 
gnons, qui fructifient même dans les parties âgées des racines. 
Très fréquemment chez les Orchidées à pseudo-bulbes qui sont 
habituellement des Orchidées à rhizomes, les racines sont loca- 
lisées en touffe à la base des pseudo-bulbes dès qu’elles sont 
fixées. Certaines espèces, Oncidium sphacelatum p. ex., laissent 
pendre leurs racines dans l'air. Dans quelques espèces, ces 
racines aériennes sont remarquables par leur rigidité. 


V. RACINES CHEZ LES PHALAENOPSIS, AERIDES, ETC. — Dans 
beaucoup d’Orchidées chez comme le Scaphyglottis violacea 
(fig. 173), les groupes de racines aériennes ne se rencontrent pas 
seulement sur les parties rampantes du rhizome, mais on les voit 
pendre des régions nodales de la tige dressée. Dans beaucoup 
d’autres Orchidées : Macroplectrum sesquipedale (fig. 18), Aerides 
odoratum (fig. 90), Phalaenopsis Schilleriana (fig. 54), les racines 
aériennes partent toutes de la région inférieure de la tige comme 
une touffe de filaments cylindriques divergents, manifestant à 
un très haut degré cette propriété qu’ont certaines racines de se 
mouler exactement sur les objets qu’elles rencontrent (Hapiotro- 
pisme de Errera). Même dans les Orchidées pourvues d'une tige 
principale, il n’y a que des racines adventives; aucune n’est 
comparable à la racine principale de la Betterave ou des Pins. 


= — 
Les premières racines qui apparaissent sur leurs germinations 
sont liées à la position des premières feuilles et insérées sur 
leurs régions nodales. Un type à racines ainsi insérées en touffe 
à la base de la tige principale, le Polyrrhiza funalis (fig. 21, H), 
nous montre un appareil radical exceptionnellement développé eu 


Fig. 54. — Phalaenopsis Schilleriana Roue. f. 


égard au volume de la plante: les feuilles et les tiges faisant 
presque défaut, les racines se chargent de chlorophylle et fonc- 
tionnent comme organes d’assimilation de l'acide carbonique. 


VI. APPAREIL RADICAL DES VANILLES. — Dans les Vanilles, 
à chaque région nodale de la longue tige, nous voyons naître 
(fig. 201) une racine cylindrique non rameuse, ressemblant par 
conséquent aux racines ordinaires des Orchidées ; mais sa surface 
est par places toute velue, les éléments de ses cellules super- 
ficielles étant tous prolongés en poils. Les racines n’ont pas de 
velamen. L'appareil radical consiste alors en racines très 


éloignées les unes des autres, pendantes dans l'air avec une 
longue pilorhize. Les racines aériennes des Vanilles sont bourrées 
de Champignons. Elles peuvent contenir de la chlorophylle. 


VII. LES PNEUMATODES. — Quelques Cymbidium présentent 
un très curieux phénomène de géotropisme négatif, c'est-à-dire 
de redressement vertical de leurs racines. Certaines ramifications 
radicales dites pneumatodes se dressent verticalement. On ne sait 
au juste à quelle cause immédiate rapporter ce phénomène. On 
dit qu’il a pour but l’aération des racines. En effet, à part 
certaines Orchidées de nos régions qu’on trouve dans des sols 
argileux, les Orchidées ne croissent pas dans une terre com- 
pacte, ni dans un milieu peu perméable à l'air. Mis en lumière 
par les botanistes, ce principe ne doit jamais être méconnu. 
Bien des Orchidées ont été perdues parce que, en les rempotant, 
on avait trop fortement tassé la terre de leurs pots ou employé 
une terre trop compacte. 


VIII. SENSIBILITÉ DES RACINES À LA LUMIÈRE. — Les racines 
demandent à être protégées des rayons directs du soleil. Dans 
leur patrie, même sous les tropiques, elles croissent à l’ombre 
des arbres qui les supportent ou des herbes et des mousses qui les 
entourent. Le Spathoglottis Lobbii vit, exposé aux rayons ardents 
du soleil, dans un sable rouge, sur les monts Sarawak, à une 
altitude de 400 à 500 mètres, mais ses racines sont protégées 
par les graminées qui croissent autour de cette Orchidée. 


IX. INDIFFÉRENCE DES ORCHIDÉES ÉPIPHYTES POUR LEUR 
SUPPORT. — Les Orchidées épiphytes n'étant Jamais parasites 
sont assez indifférentes sur le choix de leur support. Ce choix est 
bien plutôt déterminé par des conditions d'éclairage et d'humi- 
dité que par la nature spécifique du support. Le Dendrobium 
aemulum R. Br. d'Australie, croît sur l’Eucalyptus sederophloïa 
et sur le Doryphora sassafras; le Dendrobium aggregatum se 
rencontre sur le Lagerstræmia Reginae et sur le Celfis japonica ; 
le Trichopilia suavis croît sur des chênes et sur le Cupania glabra, 
c'est-à-dire sur des plantes qui n'ont entre elles aucun rapport. 
On pourrait multiplier ces exemples. 


GEPAPITRE: VIT. 


PRINCIPES IMMÉDIATS DES ORCHIDÉES. 


Les recherches chimiques ne se sont guère portées jus- 
qu'aujourd'hui sur les principes immédiats des Orchidées. Nous 
avons signalé les réserves amylacées et mucilagineuses des 
espèces à tubercules souterrains. Dans les tubercules aquifères, 
on trouve de même une abondante production de matières gom- 
meuses, une notable quantité d’amidon et des acides organiques. 

L'oxalate de chaux est abondamment répandu dans toutes les 
parties des Orchidées. 

Il n’a été signalé d’alcaloïdes chez les Orchidées qu'à une date 
toute récente. On doit la constatation de ce fait intéressant à 
M. E. de Wildemann, qui a reconnu un alcaloïde dans toutes 
les parties des Dendrobium nobile et Ainsworthit, ainsi que dans 
les racines du Phalaenopsis Luddemanniana. 

Dans la fleur de quelques Phajus, on trouve une notable 
quantité d’indigo blanc ou indigo réduit. Ce corps, en s’oxydant, 
bleuit à l’air en produisant l’indigo bleu. C’est à sa présence 
qu'est dû un phénomène bien connu de tous les Orchidophiles : 
le bleuissement des fleurs de Phajus, lorsqu'on lacère ou qu’on 
froisse leurs tissus. 


CELAP PERTE VIDE 


LES INFLORESCENCES. 


I. LES INFLORESCENCES DES ORCHIDÉES SONT TOUJOURS DES 
GRAPPES OU DES MODIFICATIONS IMMÉDIATES DE LA GRAPPE. — 
Par ce mot grappe ou racème, les botanistes entendent des fleurs 
insérées en hélice sur une hampe florifère. Jamais les Orchidées 
n’ont de fleur terminale. Chez celles qui présentent une hampe 
avec une seule fleur (hampe uniflore), la fleur unique ne paraît 
terminale que par suite d'une atrophie plus ou moins complète 
du prolongement de l’axe qui la porte; le pédoncule floral usurpe 
la place du prolongement de la hampe, et semble la continuation 
de celle-ci. 

Grappes simples et grappes composées. — La grappe est ordinai- 
rement simple, c’est-à-dire que dans l’aisselle de chacune de ses 
écailles ou bractées naît unefleur : Odontoglossum crispum(fig.55,A), 
Gongora galeata (Ag. 203), Cælogyne ocellata (fig. 213), Schlimia 
trifida (fig. 179), Xylobium pallidiflorum (fig. 7, A), etc., etc. 
Cette manière d'être est de beaucoup la plus répandue; c’est 
la forme de l’inflorescence des Apostasia (fig. 16). Elle présente 
son plus grand développement dans les inflorescences du Renan- 
thera Lowii Rchb. f. qui mesurent plus de quatre mètres ! 

La grappe est composée, c’est-à-dire formée d'un assemblage 
de grappes, comme dans le Zonopsis paniculata (fig. 46, j), dans 
l'Oncidium Cavendishianum (fig. 46, A), etc. Les grappes compo- 
sées ou panicules sont plus rares que les grappes simples; elles 
atteignent parfois plusieurs mètres de longueur. Les fleurs 


VII. 


PL. 


= 5 — 
y sont parfois fort nombreuses : tel est le cas de l’Oncidium vari- 
cosum var. Rogersit (fig. 215), dont les cent cinquante fleurs d’un 
jaune vif font songer à un vol d’abeilles d’or essaimant. Avant 
leur épanouissement complet, ces racèmes enlacent les appuis 
qui se trouvent à leur portée, tige, branches, rameaux. Ils ne 
développent d'une manière complète leurs ramifications latérales 
que lorsque la croissance de l’axe principal est suffisamment 
avancée. 

Épi. — Lorsque les pédoncules des fleurs de la grappe sont 
courts ou nuls, celle-ci passe insensiblement à la forme d’épi. 


Fig. 55. — A Odontoglossum crishum Lor.; 8 coupe de la fleur; c pollinarium; 
p O. Rossi Lor.; E Gomeza planifolia Ki.; Fr Racème de l'A da aurantiaca. 


La grappe des Orchis est un épi à fleurs écartées. Il en est de 
même de la grappe des Stelis (fig. 35, A), du Microstylis discolor 
(fig. 50, A), du Cestichis pendula (fig. 50, c), du Listera ovata (fig. 42), 
de l'Houlletia odoratissima (fig. 194). L'inflorescence arrive à l'état 
d'épi serré dans l'Oberonia iridifolia (fig. 23). Le nombre des 
fleurs de la grappe peut se réduire beaucoup : la grappe devient 
uniflore chez la plupart des Cypripédinées et dans un certain 
nombre d’Orchidées monandres : Angraecum, Mystacidium disti- 
chum (fig. 20), Drymoda picta (fig. 10), Dichaea vaginata (fig. 19), 


7 


nn e— 


Lycaste macrophylla (fig. 7, D), Lockhartia lunifera (fig. 25), 
Trichopilia (fig. 56). 

Ormbelle. — Une modification de la forme fondamentale de 
l’inflorescence mérite une mention spéciale : nous la voyons 
réalisée chez l'Ornithidium densum (fig. 24, B, c). Dans cette 
plante, les nombreux pédoncules floraux sont insérés côte à 
côte sur la surface d’un cône; on dirait une ombelle ou un 
corymbe, réduit à ses nombreux rayons extérieurs. Les espèces 
voisines montrent ce dis- 
positif réduit à quelques 
fleurs et même à une seule 
fleur. 

Capitule. — Les Octo- 
meria (fig. 35, C) nous 
montrent la grappe rac- 
courcie à ce point que 
tous les pédoncules flo- 
raux partent d’un même 
centre; on dirait un petit 
capitule planté sur la base 
même du limbe d’une 
grande feuille. 

Graphe de corymbe. — 
Le Tropidia pedunculata 
(fig. 57) nous présente une 
grappe composée, dont les 


grappes secondaires, très 


Fig. 56. — A Trichopilia marginata HEXP.; raccourcies à leur extré- 
8 son gynostème; © T. torhlis Lor., coupe du 


gynostème; D pollinarium; E Aelcia sangui- mité, tendent à former de 
olenta Loi.; F anthère; G pollinarium. : 
Da 5 LE petits corymbes. Les brac- 


D} 


tées assez grandes interviennent dans la physionomie spéciale 
de ces petits corymbes. 

Rôle des bractées dans l’inflorescence. — En règle générale, 
les bractées florales interviennent fort peu dans la forme de 
l’inflorescence. On cite les exemples dans lesquels ces pièces 
prennent un certain développement : Thunia Marshalliana (fig. 28), 
Cœlogyne Cummingii (fig. 58, A). Chez l'Elleanthus Caravata 
(fig. 59), la petite grappe extrêmement raccourcie, passant à l'état 


NE 


+ hotte fs ht À dé 


LS dd 


 —- 
d’épi, prend un facies broméloïde, à cause de ses grandes bractées 
ciliées dépassant longuement les fleurs. Ces exemples de brac- 
tées fort grandes sont de véritables raretés chez les Orchidées. 
Chez Isochilus linearis (fig. 60), les fleurs sont insérées l’une 
contre l'autre, d'un même côté de la grappe : celle-ci devient 
unilatérale; les bractées florales, relativement très développées, 
encadrent les fleurs à droite et à gauche. Nous devons citer en 
passant les curieuses bractées persistantes, coriaces, en forme de 
cuiller du Spathoglottis aurea (fig. 216), rarissime Orchidée du 
Mont Ophir dans la péninsule de Malacca, 
dont la culture reste une énigme! 

Formes spéciales de la grappe. — Chez les 
Sptranthes (fig. 61), l’axe de l’inflorescence 
est fortement tordu de manière à serrer 
les fleurs entre les bractées et l’axe de la 
grappe. Certains Bulbophyllum présentent 
comme grappe un rachis charnu, dans 
lequel les fleurs paraissent enfouies. Chez 
les Megaclinium, M. maximum (fig. 62) 
par exemple, les fleurs sont fixées sur 
les deux faces planes d'une grappe apla- 
tie, couverte de feuilles serrées courtes. 
Celles du Polychilos Cornu Cervi le sont 
sur un axe floral plat grossièrement taillé. 
Signalons en dernier lieu le facies tout 


particulier de la grappe du Platyclinis glu- pie vue 
macea (fig. 63), rappelant de loin une fruc- culata Bz. 


a 


tification de Graminée à pièces très écartées: c’est surtout la 
consistance glumelline des pièces du périanthe et leur écartement 
qui donnent cette impression. 

Rapport de la hampe florale avec les tiges ordinaires. — En 
parlant de la tige, nous avons fait connaître les rapports essen- 
tiels des hampes florales avec les tiges feuillées ordinaires et 
avec les rhizomes. Nous avons souligné l'opposition des tiges 
latérales florifères du Macroplecirum sesquipedale (fig. 18), et de 
sa tige principale feuillée. 

Dans les Orchis, nous avons montré une tige feuillée à sa 
base, devenant hampe florale dans sa partie supérieure. A côté 


00 


de ces deux types si tranchés, nous avons pris le Xylobium 
pallidiflorum (fig. 7, A), qui émet des pousses spéciales florifères 
distinctes, insérées latéralement sur son rhizome. Dans chacun 
de ces types, nous avons montré que la hampe diffère des tiges 
feuillées et des rhizomes, non seulement par sa forme, mais 
encore par sa structure et par ses rapports: le bas et le haut 


Fig. 58.— À Cœlogyne Cumingii Lor., facies; B Pleione lagenaria 
Loc; c colonne; p pollinies; E Cœlogyne speciosa Lor..; F pollinies. 


de la tige d’Orchis présentant même une structure dissem- 
blable. 

Entre ces formes extrêmes très nettes, il y a des intermé- 
diaires. Dans les Orchidées à sympodes, nous avons été conduits, 
à la suite de Pftzer, à distinguer les sympodes dans la consti- 
tution desquels entrent des pousses feuillées terminées en hampes 


] 
k 


— TOI — 


florales (sympodes acranihes), et celles où ce caractère ne se 


trouve pas (sympodes pleuranthes). Ce 
sont des caractères que Pftzer a 
employés pour différencier ses prin- 
cipales subdivisions des Orchidées 
acrotones. De même quand il s’agit 
de différencier les tribus des Pleu- 
ranthes, Pfitzer a souvent recours à 
un caractère tiré des rapports des 
hampes florifères et de leur âge rela- 
tif; ainsi il distingue les Zygopéta- 
linées des Lycastinées et des Gon- 
gorinées, par Ce premier caractère Que  linies. 


Fig. 59. — Elleanthus Caravata 
Lpz.; À facies: 8 fleur; c pol- 


les Zygopétalinées ont leur inflorescence naissant au-dessus de 


la nouvelle pousse feuillée, tandis que les deux 
autres tribus ont leur inflorescence naissant au- 
dessous de la nouvelle pousse feuillée. Il différencie 
de la même manière les Huntleyinées des Bolbo- 
phyllinées et des Maxillariées. Ces caractères tirés 
de l’inflorescence ont très certainement une grande 
généralité, comme Pfitzer l'a démontré, mais 
cependant nous ne croyons pas qu’il en résulte 
nécessairement une grande valeur taxinomique. 
Dans les Orchidées à tubercules aquifères ou à 
pseudo-bulbes, l’inflorescence naît soit à la base 
des pseudo-bulbes, soit à leur sommet. 

Les hampes florales portent quelquefois des 
bractées, et dans l’aiselle de celles-ci des bour- 
geons axillaires dormants. Les jardiniers tirent 
parti de cette observation pour marcotter certaines 
espèces, notamment les Cœlogyne. La floraison 
passée, au lieu de couper la tige desséchée du 
racème, ils détachent les fleurs fanées, mais lais- 
sent intacte la bractée précédant chaque bouquet 
de fleurs. Ils recouvrent de compost le racème, en 
le maintenant abaissé au moyen d'un fil de laiton 
recourbé en forme de crochet. Au bout de peu 


Fig. 60. — Jso- 
chilus linearis 
R. BR.: 4 facies: 
Bet c labelle et 
colonne; D pol- 
linies. 


de temps, une pousse apparaît à côté de l’ancienne bractée : 


ROLE 


chaque racème donne ainsi de deux à trois pseudo-bulbes. 


Fig. 61, — Spi- 
yanthes aesti- 
valis RicH. 


Direction des inflorescences. — La position érigée 
ou pendante du racème varie selon les genres et, 
dans un même genre, selon les espèces. Au lieu de 
s'élancer, un grand nombre de hampes s'inclinent 
vers le sol, entraînées par le poids des boutons 


_et des fleurs. Par suite de l'allongement de la 


hampe, elles pendent sous les feuilles, parfois 
même au dessous de la plante. Le règne végétal 
présente peu d'inflorescences aussi étranges que 
celles des Sfanhopea et des Acineta (fig. 65) : leurs 
racèmes naissent à la base des pseudo-bulbes et 
se dirigent verticalement de haut en bas. Cer- 
tains Masdevallia de la section des Saccolabiées 
(M. bella, Carderi, Chestertonti, etc.) présentent 


un phénomène analogue. 


Fig. 62. — Megacli- 


Durée de l'inflorescence. — La durée de l’inflo- 
rescence varie d’après les genres et selon les 
espèces : tantôt le racème ne survit guère à la 
dernière fleur; tantôt l’inflorescence est péren- 
nante et porte chaque année de nouvelles 
fleurs, comme chez plusieurs Phalaenopsis, 
chez les Masdevallia tovarensis, Ephippium, 
infracta, maculata, etc. 

Nombre des fleurs. — I1 y a des différences 
aussi considérables quant au nombre des fleurs 
portées par les grappes : certaines ne portent 
qu’une seule fleur épanouie, comme la plupart 
des Cypripédinées. En général toutefois, plu- 
sieurs fleurs s’ouvrent en même temps. Les 
épis cylindriques des Orchis portent un grand 
nombre de petites fleurs. L’Arpophyllum car- 
dinale en a plusieurs centaines; le Platyclinis 
glumacea (fig. 63) émet un racème chargé de 


mium maximum; Minuscules fleurs odorantes comme le foin 


A port; 8 fleur; 
c one paleacea 


DE, HeUE: 


fraîchement coupé. Citons encore comme exem- 
ple de floraison très abondante certains Onci- 


dium : leurs inflorescences souvent fort longues courant au loin 


— 103 — 


à travers les branches des arbres qui servent de support à la 
plante, enlaçant les unes, évitant les autres, se ramifiant à des 


Fig. 63. — Grappe du Platyclinis glumacea. 


intervalles fort variables, portent un nombre consi- 
dérable de fleurs, plusieurs centaines parfois. Signa- 
lons entre autres l’Oncidium varicosum et sa variété 
Rogiersii (fig. 215); l'Oncidium incurvum, dont les 
racèmes atteignent plus de deux mètres ; l'Oncidium 
trichodes, aux nombreuses fleurs charmantes mélan- 
gées de jaune d'or et de vert mousse; l’Oncidium 
ornithorhynchum, dont une plante cultivée par un 
amateur bruxellois portait 132 fleurs! Le pot contenant la 
plante n'avait que o"15 de diamètre. 

Hampe prolifère. — Le racème est prolifère dans un certain 
nombre d’espèces : celles qui offrent le plus souvent ce curieux 
spectacle sont les Phalaenopsis amabilis, P. Luddemanniana, 
P. Schilleriana, P. Stuartiana, Oncidium abortivum, ©. Papi- 
ho, etc., Angraecum Leonis, Phajus grandifolius, etc. 


CO PTRENRS 


FLEUR DES ORCHIDÉES. 


I. CARACTÈRES GÉNÉRAUX DE LA FLEUR DES ORCHIDÉES. — Dès 
le début de notre étude des Orchidées, nous avons fait connaître 
les caractères généraux de leur fleur. Ce sont, en effet, des 
caractères tirés de cet organe qui les définissent et qui nous 
ont donné leur diagnose. Nous avons même alors opposé les 
uns aux autres, les grands traits de la fleur de l’Orchidée 
monandre et ceux de la fleur des Cypripédinées ou Orchidées 
diandres. Nous avons vu que la fleur de l'Orchidée monandre 
est caractérisée par : 

a) un ovaire infère; b) un périanthe à six pièces; c) un 
gynostème; d) la zygomorphie de l’androcée et de la partie 
supérieure du pistil; e) les pollinies; f) l'ovaire uniloculaire 
avec un placenta pariétal. 

Le périanthe a six pièces : les trois pièces plus extérieures 
sont dites très improprement sépalaires, par opposition aux 
trois autres pièces intérieures dites pétalaires. Ce périanthe est 
zygomorphe, c’est-à-dire symétrique par rapport à un seul plan. 
Des trois sépales, l’antérieur est souvent plus important que les 
latéraux. La pièce pétalaire postérieure ou fabelle, différant des 
autres par sa configuration, son ampleur ou sa consistance, 
imprime au périanthe sa zygomorphie. Par une torsion de 180° 
de la région ovarienne, le labelle, qui est postérieur à l'origine, 
se trouve amené contre la bractée ou petite feuille à l’aisselle de 
laquelle la fleur est apparue. Les exceptions qu’on rencontre 


là + DÉS RSS 


résultent généralement d’une torsion plus forte; l'ovaire subis- 
sant, par exemple, une torsion de 360°, le labelle est ainsi 
ramené en arrière de la fleur. Si dans la description théorique, 
nous devons ne pas tenir compte de cette torsion de l’ovaire, au 
contraire nous aurons soin d’en tenir toujours grand compte dans 
les figures et dans l’examen que nous ferons des formes florales. 

Au centre de la fleur s'élève la colonne du gynostème, 
résultant de la coalescence de l’androcée et de l'organe stylaire. 


Fig. 64. — Dendrobium (Eudendrobium) Dalhousianum Roxs. et 
D. (Desmotrichum) densiflorum WaLz. 


Chez l’Orchidée monandre, l’androcée est réduit à une seule 
étamine, qui correspond à l'étamine antérieure du verticille 
externe des autres Monocotylédones. Cette étamine peut se 
montrer soit couchée sur le sommet apparent de la colonne, soit 
dressée sur le sommet de celle-ci. Cette étamine unique, très 
grande, est le dernier reste d’une phalange staminale localisée 
dans la partie antérieure de la fleur. 

Par suite d’une inégalité de développement des deux faces de 


la colonne stylaire, inégalité qui est particulièrement accentuée 


— 106 — 


au-dessus de l’insertion de l'étamine, le sommet organique du : 
gynostème occupé par le stigmate se rejette vers la face posté- 
rieure, du côté du labelle par conséquent, et vient se placer dans 
le prolongement de l’arête postérieure du gynostème. Le stig- 
mate est donc latéral et postérieur. Des trois lobes stigmatiques, 
deux seulement, les lobes stigmatiques latéraux et postérieurs 
sont utilisés comme organes collecteurs du pollen. Le troisième 
lobe stigmatique, ou lobe antérieur, est 
|| transformé en un organe bizarre, spécial, 
| ayant comme fonction de produire la 
| matière adhésive chargée de fixer les mas- 
ses polliniques à l’insecte qui en assure le 
transport : ce lobe stigmatique transformé 
a reçu le nom de Rostellum. 

Chez les Cypripédinées, la phalange sta- 
minale qui intervient dans la constitution 
du gynostème présente une grande pièce 
postérieure, étalée en bouclier, que l’on 
homologue à l’étamine unique des Orchi- 
; dées monandres et dont on fait un stami- 
node. Attachées sur le staminode, symé- 
triquement placées par rapport au plan 
antéro-postérieur de la fleur, sont deux 
étamines peu volumineuses, qui produisent 
du pollen l’une et l’autre. Celles-ci corres- 
pondent aux étamines latérales du verticille 


Fig. 65.— Acineta superba staminal interne des autres Monocotylé- 
R f 7 
CHB, I. 


dones. La présence de ces deux étamines 
fait des Cypripédinées des Orchidées diandres. 

La partie du gynostème des Cypripédinées placée au-dessus 
de l'insertion des étamines se recourbe en arrière, par une 
inégalité de développement de ses deux faces, la face antérieure 
croissant plus que la face postérieure. Le stigmate devient donc 
encore latéral et postérieur. Les trois lobes du stigmate des 
Cypripédinées remplissent tous trois le rôle d’organe collecteur 
du pollen. Bien qu’il soit plus grand que les autres, le lobe 
stigmatique antérieur des Cypripedium n’est pas encore trans- 
formé en rostellum. 


Dans les deux groupes d’Orchidées, l'androcée et la partie 
supérieure du pistil sont très profondément zygomorphes. C’est 
à la fois cette zygomorphie profonde de l’androcée et du gynécée 
des Orchidées, et la coalescence de la phalange staminale 
avec l’organe stylaire qui définissent l’ensemble appelé Orchidées, 
bien plus que la zygomorphie du périanthe. 

La masse du pollen secrété par les anthères demeure agglo- 
mérée en grosses masses, ou tout au moins en grains composés 
chez les Orchidées monandres, Chez les Cypripédinées, le pollen 
forme une masse visqueuse, dans laquelle les grains sont isolés. 

L’ovaire est uniloculaire avec placentas pariétaux chargés de 
petits ovules anatropes bitégumentés chez les Orchidées monan- 
dres. Chez les Cypripédinées, les carpelles sont fermés à des 
degrés divers, et la position des placentas suit les divers modes 
de fermeture des carpelles. 

Nous avons résumé tous ces caractères dans les diagrammes 
(fig. 11 et 15); nous devons étudier actuellement plus en détail 
ces fleurs si curieuses. Nous commencerons notre étude par la 
fleur des Cypripédinées, qui sont les moins nombreuses. 


II. MODIFICATIONS QUI ACCENTUENT LES CARACTÈRES DE LA 
FLEUR DES CYPRIPÉDINÉES ET EN PARTICULIER SA ZYGOMORPHIE. 
— La zygomorphie des fleurs des Cypripédinées est très profon- 
dément accentuée, et toutes les pièces contribuent chacune pour 
leur part à l’accentuer. 

Le sépale médian forme une grande valve supérieure, dont les 
dimensions surpassent celles des sépales latéraux. Ce sépale 
médian peut se différencier davantage et prendre la consistance, 
la coloration, en un mot l’aspect d’un grand pétale antérieur, 
comme dans les Paphiopedium villosum, var. Boxalli atratum 
(fig.66), P. Argus (fig. 67) et en général dans tous les Cypripèdes 
cultivés. La fleur semble de prime abord présenter, outre le 
labelle, trois grands pétales spathulés, velus sur leurs bords et 
marqués à leur face interne de taches brunes ou blanches qui 
tranchent sur le fond vert de l’organe. La plus grande de ces 
lames, celle qui est en haut quand on regarde la fleur, est le 
sépale médian (fig. 67) devenu pétaloïde. Les sépales latéraux, 
en forme de valves triangulaires, sont symétriques l’un de l’autre 


— 108 — 


et plus petits que le sépale médian. Ils sont tournés vers le bas 
de la fleur. C’est avec ce facies qu’on les rencontre chez le Cypri- 
pedium arietinum (fig. 13, A). Pour leur part, même à cet état, 
ils contribuent à la zygomorphie du périanthe. Ils accentuent 
beaucoup cette zygomorphie, quand ils deviennent coalescents 


Fig. 66. — Paphiopedium villosum, var. Boxalli atratum. 


par leurs bords les plus rapprochés du plan de symétrie de la 
fleur (fig. 68). Lorsque les sépales postérieurs sont ainsi con- 
crescents, ils forment une sorte de grande valve triangulaire 
inférieure, à sommet souvent bifide, comme dans le Cypripedium 
japonicum (fig. 13, B). Cette valve inférieure, qui représente 
une pièce double, peut être plus grande que la valve supérieure. 


Elle est divisée en deux parties symétriques par le plan antéro- 
postérieur de la fleur. La concrescence des deux sépales posté- 
rieurs peut être poussée à ce point, 
que la valve inférieure a un sommet 
indivis comme dans le Paphiopediuin 
concolor (fig. 13, C). 

Les pétales latéraux sont encore 
des valves étroites chez le Cypripe- 
dium arietinum. Ils sont symétriques 
l'un de l’autre et diffèrent des 
sépales par leur moindre largeur. 


Dans le Cypripedium japonicum, ces 
pétales latéraux, relativement larges, Be 67 —PoikioMiiire Areas. 
ont leur face interne marquée de sépale supérieur. 
points colorés; chez le P. concolor (fig. 13, c), ils prennent une 
consistance différente des pièces externes et d’autres couleurs. 
Dans les Paphiopedium Argus (fig. 69), P. villo- 
sum, var. Boxalli (fig. 66), P. barbatum (fig. 12), 
P. Lawrenceanum (fig. 70) etc., ils affectent la 
forme de grandes lames spathulaires de con- 
sistance charnue, couvertes des taches brunes, 
marron; ils sont souvent glanduleux et velus sur 
les bords. La croissance de ces pétales latéraux 
est relativement tardive par rapport à celle des 
autres pièces du périanthe. Chez le Paphiopedium 
caudatum (fig. 71), au moment de l'ouverture de + ee 
la fleur, ces pétales latéraux apparaissent comme Rens. f, sépale 
deux petites lames tenues, étroites: on dirait des 17#rieur. 
cordelettes : elles s’élargissent et s’allongent rapidement, puis 
plus tard elles continuent à croître, mais plus lentement. Leur 
croissance se prolonge 


pendant toute la durée 


ee = 
<=. 


de la fleur. Ils atteignent 


parfois o®:55 de lon- 


gueur. En quatre-vingt- 
dix heures, j'ai pu con- Fig. 69. — Paphiopedium Argus, pétale latéral. 
stater une croissance de o"40. Les Paphiopedium (Uropedium) 
caudatum var. Lindeni, P. laevigatum, P. X grande (fig. 218), 


TOR 


P. X Ellotianum (fig. 219) P. longifolium, etc. doivent à ces 


pétales allongés, le caractère original et la très grande élégance 
de leurs fleurs. 


_ Le caractère le plus saillant de la fleur des Cypripédinées 
réside dans son labelle en forme de sabot. Qu’on se représente 
une grande lame (fig. 72) pincée à la base, s’élargissant ensuite, 


Fig. 70. — Paphiopedium Lawrenceanum. 
et se recourbant vers le haut en formant un gobelet allongé, 
dont l'ouverture est à la partie supérieure. L’ensemble rappelle 
un peu ces sabots chinois à bout redressé. Les dessins ornant la 
surface du sabot végétal sont très variables; il en est de même de 
la forme de l'embouchure, en général très rétrécie par le reploie- 


AU — 


ment des bords du labelle. Ce grand labelle, insér 


a — 
= — 


— 


à 
À ESS 
CZ D Rs 
/ T 


Fig. 71. — Paphiopedium caudatum Prirz. 


LA 


é à peu près 


= LhNA = 


au centre de la fleur, pend vers le bas. Il est divisé en deux 
moitiés symétriques par le plan antéro-postérieur de la fleur. 


Fig. 72. — Labelle de Cypripédinée. 
Vue de face. Coupe longitudinale. 


Dans toutes les Cypripédinées, le gynostème présente la con- 
stitution type que nous avons décrite. 
Le staminode, courbé à angle droit, 
montre, quand on regarde la fleur par 
\ devant, un grand écusson de forme très 

s s variable qui cache les étamines fertiles et 
Fig. 73. — Vue latéraleet |. stiomate. Cet écusson ferme l'em- 


directe de l'extrémité du k 
gynostème du Paphiope- bouchure du labelle, mais en laissant à 


dium barbatum; a an- : , : x 

fhère: sé staminode. droite et à gauche un couloir par out 

s plaque stigmatique. insecte peut pénétrer dans la cavité du 
labelle. Toutefois, il ne pourra entrer ni sortir sans frotter les 
anthères contre les étamines et s’engluer de leur pollen visqueux. 
Ce dispositif a donc pour but d’assurer la dispersion du pollen 
par les insectes. Il est rare de voir le staminode se réduire à une 
languette herbacée, et plus rare encore de le voir remplacé par 
une étamine fertile comme Brongniart l’a signalé dans un Uro- 
pedium : ce sont là des modifications régressives. 

Au point de vue de la forme de la fleur, le gynostème a peu 
d'influence, Seul son staminode simulant un stigmate immense 
intervient dans cette forme. Les variations du staminode portent 
sur sa forme plus ou moins allongée. Il convient aussi de signaler 


PE VITE 


"UVA YLOUAAAON NAI(HIAIONMAVd 


YIEAVN 


ti VA 


VAOH131009 MWNIQGIFdIHdAI 


HAHONVHLE LA HOT AHOLTOOILHONT A4 ADAM 


sa très faible viscosité est compensée par la puissance adhésive 
du pollen. 

L'’ovaire légèrement renflé intervient un peu, mais très peu, 
dans l’aspect général de la fleur des Orchidées diandres; il se 
confond avec le pédicelle. Nous connaissons les variations de 


Fig. 74. — Paphiopedium villosum Prirz. 


la fermeture des carpelles dans les trois genres Cypripedium, 
Paphiopedium, Selenipedium : il n'y a pas lieu d'y revenir. 


III. ÉTUDE SPÉCIALE DES DIVERSES PARTIES DE LA FLEUR 
DES ORCHIDÉES MONANDRES. — Le plan de la fleur des Orchidées 
monandres est invariable et la forme à laquelle il répond est des 
plus différenciée. Nous devons donc trouver chez ces plantes 
des formes de fleurs dominantes, qui nous permettront à pre- 
mière vue, avant toute analyse de la fleur, de les rapporter aux 

8 


Orchidées, tout comme une fleur à aspect de Gueule de loup 
nous fait penser aux Personées, tout comme une fleur bilabiée 
présente à l'esprit une Labiée. Ce n’est là évidemment qu’une 
première impression; il faut la contrôler; mais tous ceux qui 
s'occupent de botanique, connaissent la vive et profonde impres- 
sion produite par ces airs de famille de toutes les fleurs d’un 
groupe naturel à caractères positifs bien définis. Tel est le cas 
des Orchidées. 

Comme les Orchidées monandres, en nombre extrêmement 
considérable, forment un groupe dominant dispersé sur tout le 
globe, il faut s’attendre à y rencontrer les modifications les plus 
étendues du type floral. Ces modifications existent; elles sont très 
nombreuses, mais beaucoup de ces formes dérivées sont mono- 
génériques ou paucigénériques. Dès lors, bien que très caractéri- 
sées, elles ne permettent pas d'établir de grandes coupes parmi les 
Orchidées monandres. Nous les étudierons cependant, en faisant 
connaître les formes d’ensemble que la fleur peut présenter. 

Certaines autres modifications de la fleur s'appliquent simul- 
tanément à un plus grand nombre de genres, à tout un groupe 
comparable à une tribu : tel est le caractère des grands sépales, 
commun à toutes les Pleurothallidées; mais comme nous voyons 
ce caractère des sépales dominants réapparaître dans d’autres 
séries, il ne peut donc suffire à lui seul pour définir les Pleuro- 
thallidées. 

De même les fleurs en forme de Cattleya, où les fleurs en 
casque se retrouvent non-seulement dans certains ensembles — 
les Ophrydées par exemple, s’il s’agit de fleurs en casque, — 
mais encore dans des groupes bien éloignés de ceux-ci : de là, 
une presque impossibilité d'apprécier à première vue les affni- 
tés secondaires d’une Orchidée sur la forme de ses fleurs; — dé 
là encore, une très grande difficulté pour définir, par la forme de 
leur fleur, les grandes subdivisions des Orchidées; — de là enfin 
une accumulation de formes différentes de fleur dans chaque 
groupe, une difficulté prodigieuse pour trouver des caractères 
propres à ce groupe et, en désespoir de cause, l’emploi de 
caractères artificiels! | 

Dans l’étude à laquelle nous allons soumettre la fleur des. 
Orchidées monandres, nous étudierons successivement : & le. 


SR 


— 115 — 


gynostème, b les pollinies, c le périanthe, d l'ovaire, et e la gra- 
dation des caractères de la fleur. 


a) LE GYNOSTÈME. — Les trois dispositifs principaux du gynos- 
tème. — Nous distinguons trois grands types dans la manière 
d'être du gynostème des Orchidées monandres : le dispositif 
cattleyien, le dispositif ptérostylidien et le dispositif ophrydien. 

1° Le dispositif catileyien nous présente un gynostème sur le 
sommet apparent duquel l’étamine est couchée. La mise en rap- 
port des pollinies avec la masse adhésive du rostellum s’y établit 


Fig. 75. — Catileya maxima: À face antérieure du gynostème, 
après ablation des sépales, des pétales et du labelle: 8 coupe 
longitudinale. Le labelle fendu en deux est indiqué: c anthère 
vue en-dessous, montrant les quatre caudicules et leurs masses 
polliniques; D pollinie isolée, vue de côté, montrant la masse 
pollinique et la caudicule: 4 anthère; b ressort au sommet de 
la colonne; p pollinies: r rostellum; s stigmate; co! gynos- 
tème; Z labelle; # lobe stigmatique fertile; g ovaire. 
par la partie supérieure de l’anthère. Le gynostème du Caféleya 
maxima (fig. 75) est un exemple de ce type. 
2° Le dispositif ptérostylidien est caractérisé par un gynostème 
sur le sommet apparent duquel l'étamine est dressée. La mise en 
rapport des pollinies avec la masse adhésive du rostellum s’éta- 
blit encore, quand elle se produit, par la partie supérieure de 
l’anthère. Les gynostèmes du Caleana major (fig. 98) et du Péerosty- 
lis nutans (fig. 6) en sont de bons exemples. 


3° Dans le dispositif ophrydien, l’étamine est dressée sur le 


— 116 — 


sommet apparent du gynostème, comme dans le dispositif ptéro- 
stylidien, mais il diffère de ce dernier par ce fait que la mise en 
rapport des pollinies avec la masse adhésive du rostellum se 
fait par le bas des loges de l’anthère. Les gynostèmes de l’Ophrys 
arachnites, de l'Herminium monorchis, en sont des exemples bien 
connus. 

Le gynostème ptérostylidien est manifestement intermédiaire 
entre les gynostèmes cattleyien et ophrydien. A certains égards, 
le gynostème ophrydien paraît le plus différencié; c’est lui qui 
représente le plus haut degré d'élévation organique que les 
Orchidées monandres aient atteint; le gynostème cattleyien est, 
au contraire, plus proche de la forme primitive de l’appareil 


Fig. 76. — G coupe du gynostème de Phajus cupreus; h vide sous l'anthère; f filet; 
p pollinies; cd caudicules; 7 rostellum; # lobes stigmatiques fertiles; 74 aile 
du gynostème; w prolongement de l'androclinium; nc face postérieure du gynos- 
tème; x pollinarium; J coupe longitudinale de la partie supérieure du gynostème 
de Cochlioda sanguinea BNTH.; a cavité dans laquelle se trouve l'anthère; co pro- 
longement du connectif; g masse adhésive; K pollinarium, vu de face; L pollina- 
rium, vu de profil. 


sexuel. Nous étudierons successivement les trois types de 
gynostème et leurs principales modifications. 

Orchidées acrotones et basitones. — Au lieu de considérer tout 
l’ensemble du gynostème, comme nous l'avons fait jusqu'ici, 
n’envisageons que la mise en rapport des pollinies avec la masse 
adhésive du rostellum; nous distinguerons deux types d'Orchi- 
dées monandres : les Orchidées acrotones, où la mise en rapport 
du pollen et de la masse adhésive se fait par le haut de l’anthère, 
et les Orchidées basitones, où la mise en rapport des pollinies et 
de la masse adhésive se fait par le bas de l’anthère. Les Orchi- 
dées basitones ont le gynostème ophrydien; les Orchidées acro- 


— 117 — 


tones ont un gynostème soit cattleyien, soit plus rarement 
ptérostylidien. 

Le gynostème cattleyien et ses principales modifications. — 
Prenons comme premier exemple le gynostème du Phajus cupreus 
(fig. 76, &). Ce gynostème nous montre une courte colonne 
convexe à sa face antérieure, concave à sa face postérieure, 
bordée par une expansion aliforme à l'union de la face convexe 
et de la face concave. En haut et en avant, nous voyons une 
étamine; celle-ci est couchée horizontalement au-dessus d'une 
dépression ou chambre qui sépare la partie stigmatique du 
gynostème de la phalange staminale (4). L'étamine se compose 
d’un court filet (f), attaché à une lame qui prolonge la région 
antérieure ou dorsale du gynostème(1). La lame dorsale du 
gynostème s'arrête au point d'insertion de l’étamine, tandis 
qu'elle se prolonge latéralement sous forme d'auricules; celles-ci 
se continuent directement avec les ailes marginales du gynos- 
tème. Cette sorte de rempart membraneux qui abrite l’étamine, 
limite une chambre dans laquelle celle-ci est couchée : c’est le 
Clinandrium de Richard (2). Dans le Phajus cupreus, la membrane 
du clinandrium est incisée au point où vient s'attacher le filet 
staminal. Outre le filet, l’étamine comprend une anthère à quatre 
sacs polliniques (fig. 76, H), disposés en deux paires : une paire 
à droite, une paire à gauche de la surface de symétrie de l'éta- 
mine. Les sacs polliniques sont placés sur la face de l’étamine 
voisine du style. L'anthère est introrse, comme disent les bota- 
nistes. 

Le connectif de l’anthère, c’est-à-dire la partie stérile qui fait 
suite au filet et qui semble le prolonger dans l’anthère, s'étend 
au-dessus des sacs en une sorte de petit bec ou de pointe. A 
l’inverse de ce qui se passe chez les autres Monocotylédones, 


(1) Il ne faut jamais perdre de vue que, par suite de l'orientation des parties 
de la fleur, la face dorsale du gynostème est placée en avant de la fleur, et sa 
face ventrale en arrière du côté postérieur. 

(2) Par abréviation, le savant orchidologue Pftzer emploie souvent ce mot, 
dans son exposition des caractères génériques, pour indiquer la membrane 
marginale qui limite le clinandrium au sommet du gynostème. Ainsi Pftzer 
dira en parlant des Trichopilia, qu'ils ont un grand clinandrium, et que les 
Helcia ont un clinanärium incisé ou frangé. 


— 118 — 


les sacs polliniques d’une même paire ne confluent pas en une 
loge; la masse de pollen que chacun sécrète reste ici autonome; 
c'est une masse composée de deux ovoiïdes juxtaposés. On 
appelle pollinies ces masses de pollen. 

Chez le Phajus cupreus, l’ensemble des pollinies est formé par 
quatre masses semblables, accolées parallèlement. On remar- 
quera de plus, dans cet exemple, que chaque masse se prolonge 
à sa face interne et vers le haut de l’anthère par une masse 
gommeuse concrétée, qu’on appelle caudicule (fig. 76, cd). Ces 
caudicules s’avancent sur le dos du rostellum presque jusqu’à sa 
pointe, n'étant séparées du rostellum (7) que par une mince 
membrane qui cède au moindre effort. 

Le stigmate (#) est placé sur la face postérieure concave du 
gynostème, vers le haut de cette face : c’est une dépression demi- 
elliptique, dont la courbure est en bas, le diamètre en haut. 
Dans cette dépression est un tissu visqueux, gluant, très adhé- 
sif, sur lequel le pollen germe rapidement dès qu'il y est déposé. 
Au-dessus vient le rostellum (r), sorte de languette ou de lame 
dont le bord sécrète, chez d’autres Orchidées, une matière 
visqueuse qui sera la matière ou masse adhésive (1) avec laquelle 
les caudicules entrent en contact. L’attache du filet à l'anthère 
est rétrécie, fragile; aussi l'enlèvement des pollinies est-elle 
accompagnée de la chute de l’anthère. Dans cet exemple, les 
caudicules sont donc placées vers le haut des pollinies; c’est du 
côté du sommet de l’anthère que la pollinie entre en rapports 
avec la masse adhésive. — Le Phajus cupreus est donc acrotone 
et son anthère est caduque. — La mise en rapport des pollinies 
avec la masse adhésive peut se faire d’une façon sensiblement 
différente chez les Orchidées acrotones. 

Prenons comme second exemple de gynostème cattleyien, le 
gynostème du Cochlioda sanguinea (fig. 76, J). Ce gynostème, à 
peu de chose près, a la même configuration que celui du Phajus 
cupreus. La concavité de la face postérieure (4) est moins accen- 
tuée, l'aile marginale qui sépare les deux faces, n’existe pas 
chez le Cochlioda. La partie de la région dorsale qui formait 


(1) On appelle souvent cette masse adhésive du nom de rétinacle. Dans le 
Phajus cupreus, cette masse adhésive est nulle. 


lame au-dessous de l'insertion du filet chez le Phajus, fait défaut 
-chez le Cochlioda: la chambre sous-staminale se réduit donc à 
une dépression qu'emplit exactement la partie fertile de l'anthère. 
Chez le Cochlioda, l’anthère est encore couchée sur le sommet 
apparent de la colonne, et son connectif se prolonge en une 
longue pointe (co). Le prolongement ailé de la face dorsale du 
gynostème au-dessus du filet ; E 
(w) est très grand, continu, non 
incisé en son milieu. Les mas- 
ses poiliniques (p) sécrétées 
par les sacs polliniques d'une 


même paire, confluent presque 
complétement en une masse Fig. 77. — Comparettia macroplectron 
unique; on remarque toutefois Ress. f.; 4 fleur; 8 labelle. 

un sillon correspondant à la lame qui séparait primitivement 
les deux sacs d'une même paire. Ce sillon est toujours visible 
près de la pointe de chaque pollinie (Kk, p). Ces pollinies sont 
renflées en bas, pointues en haut : elles 
n'ont pas de caudicules visibles, leurs fila- 
ments élastiques demeurent cachés dans le 
sillon et ne se prolongent pas en avant 
de la pollinie. Toutes proportions gardées, 
la partie supérieure du gynostème du 
Cochlioda est beaucoup plus large que celle 
du Phajus. Ses pollinies sans caudicules 


sont donc ici très éloignées de la masse 
7 Fig. 78.— Z'ygostates cor- 
adhésive du rostellum. Le rostellum du y»wfa Loz.: 8 pollinarium. 
Cochlioda ne forme pas une languette très apparente comme 
celui du Phajus ; c’est une sorte de talus abrupt (r) qui surplombe 
le stigmate, et dont la face libre est glandulaire. Cette face libre 
produit la masse adhésive (g), qui est ici une sorte de grand 
disque triangulaire, dont la pointe est dirigée en bas, et dont la 
base masque le bord supérieur du rostellum. L'union des deux 
pollinies à la masse adhésive se fait par une lame triangulaire 
épaisse (sp), convexe en dessus, concave en dessous, dont la 
pointe est appliquée au milieu du bord supérieur de la masse 
adhésive qui regardait l’anthère. La base de cette lame d'union 
des pollinies à la masse adhésive, s’applique contre le sommet 


A) 


même des loges de l’anthère, de telle sorte que dès que ces loges 
s'ouvrent, le sommet ou pointe des pollinies touche la lame de 
jonction. Comme ordinairement cette lame qui unit les pollinies 
à la masse adhésive affecte la forme d’une baguette ou d’un stylet, 
nous la désignerons sous le nom de séylet(r). Ce stylet est une 
membrane détachée dans la partie superficielle du gynostème, 
grâce à une gélification 
partielle des parois 
cellulaires sous-jacen- 
tes (z). 

Ce mode d'union des 
pollinies à la masse 


< K Ÿ 


NN 
NT 


SR 


adhésive par un stylet 


est un fait qui nous 
Fig. 79. — Ornithocephalus grandiflorus Loi. paraît marquer une 
A fleur ; B coupe longitudinale de la fleur. accentuation de la dif- 
férenciation de la plante dans le sens Orchidéen. Très répandu 
parmi les Orchidées acrotones, surtout parmi les plus diffé- 
renciées de celles-ci, nous estimons que ce caractère a une 
véritable valeur comme indication de filiation de ces Orchidées, 
bien plus que la préfoliation de leurs feuilles ou que leur mode 
de ramification. Le fait que dans 
presque toutes les grandes divi- 
sions actuellement admises chez 
les Orchidées acrotones, nous 


voyons ce caractère si spécial du 


stylet se répéter et se repro- 
duire dans les formes élevées de 


id 


IR 
| 1 


Fig.80o.— Bletilla hyacinthina Rcus. 
f: À fleur: B gynostème vu par sa Chaque groupe, nous semble mon- 


on pcype trer que les divisions basées sur 
la ramification et sur la préfoliation sont essentiellement artifi- 
cielles, et vont à l'encontre de la marche qui a été suivie dans 
la filiation des Orchidées. 

On appelle pollinarium l'assemblage formé par les pollinies, le 
stylet et la masse adhésive (fig. 82, B et fig. 83, c); le pollinarium 
peut se réduire aux pollinies et à la masse adhésive, ou même 


(1) Pfitzer la désigne par les mots stipes, Stielchen. 


id 10 


simplement aux pollinies. Lors de l’enlèvement du pollinarium, il 
en résulte une échancrure ou au moins un sillon dans le rostellum. 
Cette particularité est quelquefois employée dans la classification. 

Naturellement par arrêt de déve- 
loppement ou par atrophie, le stylet 
peut manquer, les caudicules peuvent 
ne pas se former, la masse adhésive 
n’est pas sécrétée, le rostellum lui 
même disparaît. La disparition du 
rostellum est l’indication d'une dégra- 
dation profonde. Les genres dans les- 
quels elle se présente, comme chez le 
Cephalanthera, sont pour nous entrés 
dans la période de décadence des 
caractères orchidéens. 

Cette manière d’être du gynostème Fig.S1.— Epidendrum ciliarel..: 
cattleyien, qu'elle donne d’ailleurs  4feur: scoupe longitudinale du 


k , . ÿ gynostème; c gynostème vu par 

naissance à un pollinarium sans stylet sa face postérieure; sm sépale 

E : . x 5 médian ou antérieur: s] sépales 
ollinarium à RÉ 

ou à un p an stylet, est latéraux; fm pétale médian ou 


extrêmement répandue chez les Orchi- postérieur: p] pétales latéraux; 
: . asp éperon axial; nc canal sty- 
dées acrotones, dont la très grande Re 5 


majorité montrent cette disposition ou ses formes dérivées. 
Nous la trouvons dans les Cattleya 
(fig. 75), les Odontoglossum (fig. 55, Ÿ 
A, D), etc. et nous constatons chez » 
presque toutes ces plantes une 
tendance manifeste à courber l’en- 
semble de la colonne, de manière à 
tourner sa concavité vers le labelle. 
Comme petites modifications de 
ce gynostème type, nous rencon- sm\ 
trons en premier lieu des gynos- 
tèmes remarquables par leur ros- Fig. 82. — Coryanthes maculala 
tellum prolongé en longue pointe,  Hook. 4 fleur; 8 pollinarium. 


sur laquelle s’étend un prolongement filiforme du connectif. Tel 


(1) Dans toutes les figures de fleurs, ces lettres conservent la mème 
signification. 


M PI 


est le cas du Comparettia macroplectron (fig. 77) et à un degré 
beaucoup plus accentué celui du Zygostales cornuta (fig. 78) et de 
l'Ornithocephalus grandiflorus (fig. 79). Cette dernière plante doit 
même son nom générique à la ressemblance de son gynostème 
avec une tête d'oiseau. D'ailleurs dans 
le Zygostates et l’Ornithocephalus, la 
colonne se raccourcit au point que le 
stisomate devient basilaire. 

Une seconde modification, qui n’est 
aussi que l’accentuation d’un caractère 
déjà existant, est le grand clinan- 


” À @ drium de l’Huntleya meleagris, du Tri- 
Fig. 83. — Notylia bipartita 


Rcus.f.; Afleur; cpollinarium, l’Helcia sanguinolenta (fig. 56,E), dont 


chopilia marginata (fig. 56, B) et de 


le bord est si élégamment frangé. 

Si le haut du gynostème au lieu d’être horizontal s’élève 
en talus vers la face antérieure, l'insertion de l’'étamine est sur- 
élevée en quelque sorte, et l’anthère semble pendre sur ce talus 
la tête en bas. Nous voyons de bons exem- 
ples de cette manière d’être dans Plesione 
lagenaria (fig. 58, c), dans Cœlogyne spe- 
ciosa (fig. 58, E), Thunia Marshalliana 
(fig. 28, c), Bletilla hyacinthina (fig. 80), 
Neogyne Gardneriana (fig. 211), Epiden- 
drum ciliare (fig. 81). Dans les fleurs 
hermaphrodites et mâles du Catasetum 
laminatum (fig. 88), c’est-à-dire dans les 
très curieuses fleurs à forme de Myanthus 
de cette plante, le gynostème se prolonge 
dorsalement en une lame terminée par 


Fig. 84. — Thecostele Zol- ; SE - 
lingeri Rous. f.: A fleur: Une longue pointe; l’étamine pend de cette 


8 coupe longitudinale de 55e a tête en bas. La masse adhésive est 

la colonne; c pollina- hi 

rium. presque verticale, mais cachée contre la 
face stigmatique du gynostème. Les bords du gynostème se pro- 
longent en deux pointes qui se dirigent de haut en bas; elles 
sont d'une sensibilité extrême. Dès qu’on les touche, le pollina- 
rium est projeté au loin. On nomme ces prolongements antennes 


(fig. 88, at). Leur sensibilité n'est pas toujours égale : tandis 


= 


. cédé DE 


— 123 — 


que toutes deux sont également sensibles chez le Catasetum ma- 
crocarpum, l'antenne droite des C. saccatum et C. laminatum (fig. 88) 
est beaucoup plus sensible que la gauche. Chez le Mormodes 
Ocannæ (fig. 221), l’élévation du haut de la 
région dorsale du gy- 
nostème est encore 
plus considérable. 
Un bien petit nom- 
bre de gynostèmes se 
font remarquer par 
leurs lobes stigma- 


tiques collecteurs de- 
venant indépendants Fig. 56. — Acanthe- 
| RES phiphium javant- 

| : et très spécialisés. cum BL. coupe 
Fig.85.— Phajus Blumei Lo, C té DE longitudinale de la 
coupe longitudinale de la € Caractére, qui In- fleur: f pied du 


fleur. dique pourtant une gynostème. 
différenciation plus accentuée, reste à l’état de simple caractère 


générique chez les Orchidées acrotones. Exemples : Gymnochi- 
lus, Vrydagzynea gracilis, Sophronitis. 
Le long gynostème du Coryanthes maculata (fig. 82, e) est 


Fig. 87. — 8 Lissochilus Horsfallii ; c pollinarium; » Geodorum fuca- 
tum Lor., gynostème et labelle; E Cyrtopodium Andersons R. BR; 
F fleur du Govenia liliacea Loi: c gynostème et labelle. 
remarquable par la courbure de sa partie supérieure, rendant 
horizontale son extrémité, et la présentant sur le trajet que 
doivent forcément suivre les insectes sortant de cette fleur. 


Dans le Notylia bipartita (fig. 83), le haut du gynostème 


s'infléchit aussi assez fortement vers le sépale médian, redressant 
ainsi la direction de l'étamine, puisqu'il s’agit d’une fleur ouverte 


pur f A 


Fig. 88. — Catasetum laminatum Loi. Fig. 89. — Batemania Col- 
(forme Myanthus); A fleur; 8 coupe du leyi LpL., A coupe de la 
gynostème; at antennes; © gÿnostème fleur; 8 pollinarium; pm» la- 
vu de face. belle; f pied du gynostème. 


dans un plan vertical. Chez l’Haemaria discolor, le gynostème 


Fig. oo. — Eriopsis rutidobulbon Hook.; À la plante; 
8 gynostème et labelle; c anthère; », E pollinarium. 


est tordu de façon 
à le rendre disy- 
métrique. Le dos 
de l’anthère est 
amené en avant de 
la fleur, -etson 
bec est relevé un 
peu vers le haut. 
Le gynostème du 
Thecostele Zollin- 
geri (fig. 84), ac- 
centue lazygomor- 
phie de la fleur en 
se ployant en ge- 
nou vers le tiers 
de sa partie in- 
férieure. “Pare 
procédé, la région 
stigmatique (c) se 


trouve très à découvert. Comme chez la Sauge de nos prés, le 


stigmate se présente à l'embouchure d'une sorte de gouttière 
glandulaire formée par la base du labelle. 

Une modification beaucoup plus fréquente du gynostème 
consiste dans le 
prolongement de 
sa région basilaire 
en une sorte de 
lame ou talus 
épais, en bas du- 
quel est placée 
l'insertion du la- 
belle. On donne à 
ce prolongement 
le nom de pied du 
gynostème (Saülen- 
fuss). Nous le 
trouvons avec des 
degrés de déve- 
loppement divers 
chez les Phajus 
Blumet, où il Fig.o1.— Zygopetalum Mackayi Hook., fleur vue de face. 
participe à la formation de l'éperon (&g. 85), Acanthephippium 
javanicum (fig. 86), Cyrtopodium Ander- 
soni (fig. 87, E), Govenia liliacea (fig. 87, 
F), Lycaste Cobbiana (fig. 183), Batema- 
nia Colleyi (fig. 89), Eriopsis rutidobulbon 
(Gig.90), Zygopetalum Mackayi (fig. 91 et 
91°). Chez le Gongora tricolor (fig. 92), 
le pied du gynostème, très différencié, 
forme une baguette verticale portant en 
haut le labelle et latéralement deux 
sépales latéraux triangulaires (s/) rejetés 
en arrière, très joliment tachetés. Dans | 
l'Acrides Vandarum (fig. 93), non seu- DV dope 


J 


lement les sépales latéraux (s/) viennent  gitudinale de la fleur; 5 gy- 

Es | À nostème vu de face: c, D polli- 
s'insérer sur le grand pied styliforme,  narium va de face et de dos: 
mais les pétales latéraux (p/) y descen- Pi dugynostème; d callus. 
dent à leur tour. En même temps, le pied participe à la formation 


d'un grand éperon labellaire (sp). 


— 126 — 


Ce développement du pied de la colonne de l'Aerides Vanda- 
rum (äg. 93) n’a d’équivalent que celui du Drymoda picta (fig. 10). 


Fig. 92.— À Fleur de Gongora 
tricolor Rcus. f.; B polli- 


L’hypertrophie du pied a pour effet, 
dans cette fleur, de projeter loin de la 
colonne toutes les pièces postérieures 
du périanthe. 

Toutes choses égales, chez les Orchi- 
dées acrotones, l’existence d’un prolon- 
gement basilaire au gynostème marque 
une différenciation plus élevée que l’ab- 
sence de cet organe. 

Un certain nombre d’Orchidées acro- 


. A 
nium; © coupe transversale tones nous montrent, de même que le 


de l’hypochilium (h). 


Drymoda, de grandes expansions lamel- 


laires (fig. 10, y), appelées stélidies ou auricules quand on ne veut 


Fig.93.— Fleur d'Aerides 
Vandarum Rcus. f. 


pas préjuger leur nature morphologique, 
staminodes quand on y voit des restes 
d’étamines avortées. Au point de vue des 
stélidies, l’Arundina pentandra mérite une 
mention toute particulière. Tandis que 
dans les genres Thunia, Bletilla, et dans 
l’Arundina bambusifolia même, nous trou- 
vons le gynostème type de l’Orchidée 
acrotone, l’Ayundina pentandra — et c’est 
le principal caractère qui différencie cette 


espèce — présente, outre son étamine normale, deux étamines 


si pr 


Fig. 94. — Fleur d Periste- 


ria elata Hook., vue d 
face. 


et forme une sorte de 


latérales symétriques l’une de l’autre, 
insérées sur la colonne, et de plus deux 
autres étamines latérales placées à droite 
et à gauche de la colonne. Cinq des 
étamines du type normal des Monocoty- 
lédones sont donc représentées chez cette 
espèce : l’étamine antérieure externe, les 
étamines latérales internes et externes. 
e Lorsque le gynostème cattleyien 

devient très court, il s’élargit souvent 
demi cylindre ou de coque, dont la région: 


stigmatique occupe toute la face postérieure de la colonne. 


Généralement alors les auricules ou stélidies sont très dévelop- 
pées : tel est le cas du Peristeria elata (fig. 94), où la face 
stigmatique du gynostème figure une sorte de coupe. Tel est 
le cas aussi du Trichocentrum albopurpureum (fig. 95); mais chez 
ce dernier, la colonne ne se prolonge pas en pied. C’est dans 


la ravissante petite fleur de Drymoda 
picta (fig. 10), que cette disposition 
apparaît au plus haut degré; les stéli- 
dies deviennent très grandes et sont 
tachetées de couleurs vives. En même 
temps, le pied de la colonne prend, eu 
égard à la taille de la plante (0"04), des 
dimensions gigantesques. 
Chez un très petit nombred’Orchidées - 

à gynostème cattleyien, le stigmate se nn 
montre basilaire, alors que la partie 4 few; 5 coupe longitudi- 


‘ nale du gynostème et de 
rostellaire est encore suffisamment haute  l'éperon: c pollinarium. 


pour donner un gynostème tant soit peu élevé. Exemple : Zygo- 
states cornuta, Chytroglossa. 

Quand la colonne devient ainsi très courte, il en résulte 
souvent un redressement de l’anthère. La région collectrice du 
stigmate est parfois alors rendue horizon- 
tale, Telipogon (fg. 96); le lobe rostellaire 
devient vertical (8) et l'anthère, demeurant 
toujours couchée contre la face antérieure 
de ce rostellum, se trouve relevée vertica- 
lement. 

L'’anthère peut se montrer relevée sous 


ig. 96. — Telipogon sp. 
N Pr1IZz.; 4 fleur d'appa- 
transformant en une sorte de corne à ,.e PM nee 


embouchure presque horizontale, comme 2 Srnostème vu de pro- 
à fil; c gynostème vu d'en 
chez le Cirrhaea dependens (fig. 97). Dans hat. 

ce cas, le lobe rostellien devient extrêmement petit et se consacre 


tout entier à la production de la masse adhésive. L'anthère du 


+ 


une tout autre influence, le stigmate se 


Cirrhæa figure une sorte de petite sacoche, dressée contre le dos 
du cornet sur la face qui regarde le sépale médian. 


Le gynostème ptérostylidien et ses modifications. — Prenons 


— 128 — 


d'abord comme exemple le Caleana major (fig. 98). A première 
vue, le gynostème présente une grande ressemblance avec celui 
des Phajus, des Cattleya et des plantes étudiées précédemment. 


Il ne paraît en différer que par sa grande 
largeur, qui lui donne un aspect pétaloïde. 
En l'analysant de plus près, nous y rele- 
vons cependant une différence profonde, 
indication très nette d’une autre série 
orchidéenne encore acrotone(1), les Néot- 
tinées de Pftzer. 

Ce qui frappe dans le gynostème du 
Caleana (fig. 98), c'est qu’au-dessus du stig- 
mate demi-circulaire, paraît se dresser 


Fig. 97. — Cirrhaca de- l'anthère, dont la base arrive au niveau 
pendens Rous. f.; À la 


fleur; 8 le gynostèmeet du bord supérieur du stigmate. L’anthère (a) 


sonpied; € pollinarium. 


pointe son sommet en haut, si on ne tient 


pas compte de cette condition particulière que la fleur très 
ouverte des Caleana major tourne son gynostème en bas et son 


Fig. 98. — Caleana 
major R. Br. 


la grande colonne, fortement courbée vers le labelle, est moins 


labelle très irritable en haut. Le rostellum, 
ici très réduit, est un caractère particulier du 
petit groupe des Ptérostylidées, dont fait partie 
le Caleana. Malgré cette position dressée de 
l’anthère, la mise en rapport des pollinies et 
de la masse adhésive se fait par le haut de 
celle-ci (2). Ainsi, ces plantes restent acrotones: 
ce sont des acrotones où l’anthère a pris la 
position dressée, au lieu de venir coucher sa 
face interne sur le dos du rostellum. Dans les 
Pterostylis de la section Antennæœa que nous 
avons pris pour type au début de cette étude, 


large que chez le Caleana major. Vers sa partie supérieure 


(1) On peut à la rigueur désigner ce groupe dans son ensemble sous le nom 
de Néottinées employé par Pfitzer, mais à la condition d’en enlever les Pogo- 
niéesetles Vanillées, dont le gynostème a manifestement le dispositif cattleyien. 
Mèëme alors, il y aurait encore des formes de transition entre les deux séries 
d'Orchidées acrotones. 

(2) Là où la pollinie n’est pas pulvérulente. 


seulement, elle émet à droite et à gauche une expansion lamel- 


laire. 


Chez le Thelymitra javanica (fig. 90, B), le gynostème est très 


court : par suite de sa brièveté, les deux lobes 
stigmatiques collecteurs paraissent basilaires. 
Le lobe rostellien se prolonge en une longue 
baguette filiforme, qui vient en contact avec 
la partie supérieure de l’anthère, celle-ci 
paraissant dressée sur le sommet même du 
gynostème. Quand les pollinies ne sont pas 
pulvérulentes, leur mise en rapport avec la 
masse adhésive se fait par en haut. Les carac- 
tères essentiels signalés plus haut chez les 
Ptérostylidées, ceux qui font le gynostème 
ptérostylidien, se retrouvent donc chez le The- 
lymitra. Mais cette fleur appelle notre attention 
sur un autre point : à droite et à gauche de 
son gynostème, sont deux grandes lamelles 


Fig. 09. — À Thely- 
mitra ixioides Sm., 
fleur; B Th. java- 
nica BL., gynostè- 
me et staminodes. 


ou staminodes qui enveloppent le gynostème et cachent toute 


sa face antérieure. Sur leur bord posté- 
rieur, ces staminodes portent une sorte 
de baguette terminée par un pinceau de 
poils glandulaires (fig. 99, B). 

Une autre Néottinée, le Diuris elon- 
gata (fig. 100), nous montre une ma- 
nière d’être des pièces du gynostème 
bien intéressante. On dirait que cette 
Orchidée n’a pas de gynostème; l'an- 
thère (a) est libre, dressée, avec sacs 
polliniques presque marginaux. Le style 


est libre, dressé, terminé par un stig- Fig. 100. — Diuris elongata 


€ Wis# a <s Sw.; À fleur vue de face: 

mate (#) à peine incliné en arrière. Dans ne vide Copé, 
leur ensemble, style et stigmate forment l'un des staminodes est 
5 , enlevé; © gynostème et 

une sorte de cornet à embouchure supe- étamine vus par la face 


rieure. Le rostellum (r) ponctiforme, 


antérieure. 


réduit à sa masse adhésive, occupe le milieu du bord antérieur 
de la surface stigmatique. A droite et à gauche du style et de 
l'étamine, on voit une lamelle spathulée (x) à bord denté, avec 


9 


nervures semblables à une petite feuille dont le pétiole porte 
des mamelons glandulaires. Naturellement on voit des étamines 
atrophiées dans ces lamelles, et on en fait des staminodes. Au 
point de vue Orchidéen, la zygomorphie de toutes ces pièces 
est très accusée, leur différenciation est très grande. De même 
que pour le Thelymitra, nous avons là un exemple de différen- 
ciation du type Orchidée dans un sens spécial. La mise en rapport 
des pollinies avec la masse adhésive 
du rostellum se fait encore par le 
haut de l'anthère. Le gynostème des 
Diuris se trouve donc très différencié 
A comme gynostème ptérostylidien. Il 
io or ete Nidus-avis; €St très probable que nous avons 

| affaire à un type à colonne très 
courte, chez lequel la partie du gynostème inférieure aux lobes 
stigmatiques et à l'insertion de l’étamine n’est pas représentée. 

Chez le Neotha Nidus-avis (fig. 101), le gynostème (B) assez 
grand, à face postérieure convexe, montre l’indication d’un 
prolongement basilaire. La partie collectrice du stigmate (x) 
est transversale; le rostellum (7) forme une grande lamelle 
triangulaire d’une sensibilité extrême, qui se relève vers le 
haut. Au moindre contact, il se déchire et met en liberté sa masse 
adhésive qui englue les caudicules. Le pollinarium est enlevé 
par l’insecte au moment de sa sortie de la fleur. L’anthère (a) 
est appliquée par sa face interne contre le dos du rostellum. On 
dirait une anthère couchée que le développement exagéré du 
rostellum force à se relever. 

Telle est aussi la manière d'être de l’anthère chez le Lastera 
ovata (fig. 42, c): nous y remarquons de plus un grand clinan- 
drium, dont le bord cache presque complètement le dos de 
l’étamine. Ces manières d’être se rapprochent davantage de ce 
que nous avons vu chez les gynostèmes cattleyiens(t). Dans le 
Dossinia marmorata (fig. 47, B), Néottinée de la petite série des 
Physurées, le gynostème ne diffère de celui d’un Phajus à colonne 
courte que par son anthère presque complètement dressée et par 


(1) La partie collectrice du stigmate du Listera ovata est horizontale, cachée 
par la saillie du rostellum. 


— 131 — 


un caractère en quelque sorte personnel, à savoir une saillie en 
lamelle de la face postérieure de la colonne, qui s’avance dans la 
bosse renflée que porte inférieurement le 
labelle. L’Haemaria discolor (fig. 102) nous 
montre une étamine nettement couchée sur 
le dos d'un rostellum lamellaire, tout comme 
si nous avions sous les yeux une plante voi- 
sine des Cattleya et des Phajus. Il semble 
que ce soit de cette manière, ce qui ne veut 
pas dire que ce soit par la voie des genres 
Dossinia, Haemaria, qu’on passe du gynos- 
tème cattleyien au gynostème ptérostylidien. Fig: 102- — Haemaria 


discolor Loi.; A fleur 
Nous savons que le gynostème de l’Haema- vue de face; 8 fleur 


PRES t eeire vue de côté; c coupe 

ria discolor montre encore un fait extrême- 4 e-nostème: D pol- 

ment intéressant, au point de vue de l'histoire  linarium. 

de cet organe. Il est tortillé de façon à le rendre asymétrique. 
L’Odontochilus uniflorus (fig. 103, B) présente un gynostème 

réduit à une colonne très courte, portant une partie collectrice (#) 


fortement bombée, surmontée par un immense rostellum (r) 


Fig. 103. — 4 Vrydagzynea gracilis B., fleur après enlèvement des pétales et des 
sépales, l'éperon (sp) ouvert; & anthère; ”# lobes stigmatiques; rostellum ; 
æ formations décurrentes dans l'éperon (staminodes?); 5 Odontochilus uniflorus 
(BL.) Beta, gynostème et labelle: y auricules du gynostème; v glande à la 
base du labelle; c Cystorchis javanica, labelle sans l'éperon, montrant les deux 
glandes (w); D Zeuxine integerrima BL., gynostème et labelle; y auricule ; 
7 rostellum: E gynostème, le pollinarium enlevé; F pollinarium. 


triangulaire pointant verticalement. Sur le dos de ce rostellum 
est appliquée une étamine sessile, dont l'anthère (a) se trouve 
presque verticale; c’est le redressement de l’'anthère, déjà 


constaté chez les Néottinées proprement dites. Le gynostème 
présente de chaque côté de sa face postérieure une sorte de 
lame ou de bourrelet arrondi en haut (y), et qui forme vers le 
bas un stylet descendant vers le labelle. On voit encore dans 
cette pièce un staminode. | 

Chez le Vrydagzynea gracilis (fig. 103, A), autre Physurée voi- 
sine des Odontochilus, les deux lobes stigmatiques collecteurs (#) 
sont distincts, saillants de chaque côté de la base d'un petit 
rostellum (7) dressé. L'anthère dressée (a) est comme enchâssée 
dans un petit gobelet formant une sorte de clinandrium. En 
bas de la face postérieure du gynostème, nous trouvons une 
glande médiane, .et de chaque côté de celle-ci, deux longs fila- 
ments terminés par une boule glandulaire (w), plongeant dans 
l’'éperon labellaire. Faut-il y voir des pièces homologues des 
appendices de l’Odontochilus ? C’est probable; mais on ne peut 
rien affirmer. Ce sont là, en tout cas, des différenciations bien 
particulières des diverses parties du gynostème. 

Le gynostème ophrydien et ses modifications. — Comme premier 
exemple de gynostème des Orchidées basitones, prenons celui du 
genre Ophrys (fig. 104 et fig. 105, À, 
B, c). Ce gynostème est excessive- 
ment court; par suite les deux lobes 
stigmatiques collecteurs, plus ou 
moins confondus en une seule sur- 
face, sont basilaires et marquent une 


dépression sur la face postérieure 
Fig. 104. — Ophrys Arachnites du gynostème. L’unique étamine 
Rcus.; A fleur; B coupe. + : 2 
montre une anthère sessile, dressée 

sur le sommet apparent de la colonne (fig. 105,A). Sa base s’avance 
sur le rostellum. Le rostellum est une pièce triangulaire, étroite 
en haut, pincée entre les deux loges de l’anthère. Au contraire 
vers le bas, le rostellum présente deux parties plus épaisses, dans 
chacune desquelles se produit, par gommification des tissus, 
une pelote adhésive. La région sécrétante étant ici bien diffé- 
renciée, formant une petite masse bien visible, et la matière 
adhésive paraissant enchâssée dans une poche, on donne à cette 
poche le nom de bursicule. Seul, le genre Ophrys a ainsi deux 


A 


bursicules bien distinctes : une à droite, l'autre à gauche de 


TT — 


la languette supérieure du rostellum (fig. 105, B). Si au moment 
de la maturité de l’anthère, on regarde les pollinies encore en 
place, on voit qu'elles sont pourvues d’une caudicule, non 
plus insérée au sommet de l’anthère, mais bien à sa base. 
Les caudicules basilaires “viennent se mettre en contact avec 
les masses adhésives des bursicules, auxquelles elles adhèrent 
par une lame membraneuse ou 
disque, qui est contractile. 

Le procédé de mise en rapport 
des pollinies avec la ou les masses 
adhésives est donc tout autre que 
celui des Orchidées acrotones. e 

US LE : Fig.105.— Ophrys aranifera Hups.: 
Comme l'émission des caudicules 4 gynostème; 5 bursicule; c uns 
se fait par le bas de l’anthère, on  P°I&- 
a donné le nom d’Orchidées basitones à toutes celles qui se 
comportent comme les Ophrys. 

En général, chez ces Orchidées basitones, l’anthère largement 
attachée au gynostème, demeure en place après l’enlèvement des 
pollinies. La membrane qui forme la surface extérieure du 
rostellum, est d’abord continue. Dès que la fleur est ouverte, 
elle se rompt au plus léger contact. Cette rup- 
ture n'’altère pas la forme du rostellum, mais elle 
transforme la partie inférieure de chaque bursi- 


cule en une lèvre qui s’abaisse facilement par 
pression, mettant à nu la masse adhésive, mais 
qui d’autre part se relève dès que la pression 
cesse, et recouvre de nouveau la masse adhésive. 
Dans les genres Orchis (fig. 106 et 5, À) et 
Comperia (fig. 5, E), les deux bursicules sont 
confondues en une seule pièce, les masses 
adhésives restant distinctes. Chez les autres . 
5 Re 1 Ÿ x Fig.106.— Orchis 
Sérapiadées (Serapias, Aceras, Himantoglossum, latifolia; a coupe 
: b : f du gynostème et 
Anacamts), les bursicules sont confondues en 4e]'éperon;sros- 
une seule, et il en est de même des masses ‘ll. 
adhésives (fig. 5, j). Les gynostèmes dans lesquels la confluence 
des bursicules et des masses adhésives est complète, semblent 
être le plus haut degré de différenciation que l’Orchidée basitone 


ait atteint. 


— Hoi — 

Si nous remontons, au contraire, des Ophrys aux Gymnadenia, 
nous voyons la différenciation des bursicules s’atténuer et dispa- 
raître. Chez l’Herminium monorchis (fig. 107, B, D), par exemple, 
les deux masses adhésives sont encore protégées par une mince 
membrane non différenciée en bursicule (c, g). Chez le Gym- 
nadenia (fig. 109, G), les masses adhésives sont à nu de chaque 


SH D C > A 
Fig. 107. — À Cœloglossum viride Hart., fleur; 8 Herminium Monorchis L., fleur; 


C gynostème; D pollinies; E Chamaeorchis alpina Ricx., fleur; Fr Nigritella 
angustifolia Ricx. 


côté du rostellum. Comme intermédiaire, on peut citer les 
Perularia furcescens, Bartholina pectinata et Derümeria squamata, 
dans lesquels les masses adhésives, à nu sur le rostellum, sont 
abritées par deux 
replis provenant de 
côtés de la base de 
l’'anthère. 

Comme petites 
modifications se- 


condaires du gy- 


| hi ll. 
| (ll 


Al LU LE 


nostème ophry- 
À dien, nous nous 
bornerons à citer 
= celles que nous 
Fig. 108. — Habenaria Bonatea Res. f.; À anthère et montrent les Habe- 
rostellum vus de côté; B les mêmes vus de face: c coupe > 
schématique; D pollinies; € Cynosorchis fastigiata NA4714 et les Saty- 
Lor., anthère et rostellum vus de côté. vium. 
Chez les Habenaria (fig. 108, A, B), le rostellum (7) prend un 
très grand développement, tant dans sa partie médiane que 
latéralement, et ses parties se différencient à un haut degré. Les 


masses adhésives (g) y sont portées à l’extrémité de baguettes. 


1135 — 
L’anthère (a) coiffe le rostellum comme un capuchon, et tend 
à s’appliquer sur lui par sa face interne. Les lobes stigmatiques 
collecteurs (z) sont très isolés : ce sont au moins deux languettes 
distinctes chez l’H. Bonatea; ce sont deux filaments terminés 
par une sorte d'entonnoir chez l'H. Gourlieana. Là donc les pièces 
du gynostème sont à la fois très distinctes et très spécialisées. 

Dans les Saéyrium, la partie collectrice du stigmate forme un 
entonnoir, dont l’embouchure redevient horizontale. Comme 
celle-ci est placée à l'extrémité d'une longue colonne, on ne peut 
invoquer comme cause productrice, la brièveté de cette colonne. 
Sur la face antérieure est un talus fortement incliné en avant; 
l’'étamine est couchée sur ce talus; elle pend par suite la tête 
en bas, mais en avant. La disparition, dans le genre Safyrium, 
du caractère tiré de la latéralité du stigmate, semble indiquer 
bien plutôt un phénomène régressif qu’une disposition primitive. 
Comme il modifie profondément un des caractères essentiels de 
l'Orchidée, il convenait de le mentionner tout particulièrement. 

b) LES POLLINIES. — Il nous reste peu de chose à ajouter à 
ce que nous avons déjà dit des pollinies. Leur origine est la 
même que celle du pollen dans toutes 
les autres Monocotylédones. Chaque 
glande mâle ou sac pollinique de l’an- 
thère, produit une masse de cellules 
épithéliales, qui sont des cellules 
mâles encore imparfaitement dévelop- 
pées. Tandis qu'ailleurs, les cellules 
LD RTE DES Fe ES ue 
par disparition ou par concrétion des  conopsea R. Br; x pollinie 
lamelles cellulosiques qui limitaient Er er ti 
leurs cellules mères, donnant ainsi un en avant. 
pollen à grains libres, chez les Orchidées ces parois cellulo- 
siques restent gommeuses et maintiennent adhérents tous les 
éléments de la masse épithéliale, c’est-à-dire tous les grains 
de pollen. La masse qui en résulte est une pollinie. 

La pollinie apparaît tantôt homogène, cireuse (Vandées, 
Épidendrées) ; tantôt marquée de sillons ou de rides, dessinant 
un réseau à sa surface; tantôt encore composée de masses 


— 136 — 


élémentaires, reliées les unes aux autres par des prolongements 
filiformes élastiques (pollinies grenues et sectiles); tantôt enfin 
les pollinies peuvent être puluérulentes, c'est-à-dire avoir l’appa- 
rence d’un pollen à grains séparés. Même dans ce dernier cas, 
on reconnaît, à l'examen microscopique, que chaque grain se 
montre composé de quatre éléments polliniques intimement 
accolés, comme chez les Typha, les Acacia, les Erica, etc. 
Ce que l’on appellerait improprement grain de pollen est en 
réalité une fétrade de grains. 

Ces tétrades sont réunies en nombre variable dans les masses 
élémentaires des pollinies grenues et des pollinies cireuses. 
L’agencement de ces tétrades est très constant pour chaque forme 
générique. Il en est de même du groupement des massules des 
pollinies grenues. Ordinairement celles-ci sont reliées entre elles 


Fig. 110. — Aerides odoratum Lour.; À la plante; B fleur, coupe 
longitudinale; c pollinarium. 


par des fils élastiques, assez solides, anastomosés et contribuant 
plus ou moins directement à former la caudicule. Selon que la 
convergence de ces filaments élastiques se fait dans l’intérieur 
de la pollinie ou sur la surface de celle-ci, les rapports de la 
caudicule avec les masses élémentaires sont plus ou moins faciles 
à saisir. C’est surtout dans les pollinies cireuses, compactes, à 
caudicules axiles, qu’ils sont les plus difficiles à observer. 
L'extrémité libre des caudicules est composée d’un certain 
nombre de filaments élastiques, plus ou moins complètement 
fusionnés. Ces filaments sont formés par une matière gommeuse 


ar — 
concrétée, un peu différenciée par rapport à celle qui réunit les 
tétrades dans les massules (fig. 8). 

Les poilinies nées dans deux sacs voisins demeurent souvent 
libres ; elles peuvent aussi se fusionner plus ou moins complète- 
ment, se rapprochant ainsi de ce qui se passe chez les autres 
Monocotylédones, où les deux sacs polliniques d’une même paire 
confluent en une seule loge dans l’an- 
thère müre. On trouve tous les degrés 
possibles de fusion des pollinies voi- 
sines. Quand la fusion est complète, 
on considère la masse résultante 
comme une pollinie simple, l’anthère 
ne produisant alors que deux polli- 


nies au lieu d'en donner quatre comme ; | é 
me 3 : Fig. 111. — Saccolabium gigan- 
précédemment. L’Aerides odoraiwm zum Loz.; a coupe longitndi- 


(fig. r10, c), le Saccolabium gigan- "21% la fleur; 8 pollinarinm. 
teum(fig.111,B),le Grammangis Ellisii (Gg. 112,c), nous montrent 
des pollinariums avec deux pollinies seulement. Les Thunia 
Marshalliana (fig. 28). Cattleya labiata (fig. 37, B, c), Scuticaria 


Steelei (Gg. 32, B), ont des pollinariums à quatre pollinies. On voit 


Fig. 112. — Grammangis Ellisii Ross. £.; a fleur; 5 gynostème; c pollinarium: 
D labelle. 


ces quatre pollinies bilohées chezle Calanthe veratrifolia (fig. 22,c), 
chez l’Acanthephippium (fig. 116,8, c). Les lobes en sont très isolés 
et donnent un pollinarium à 8 pollinies chez le Laelia Perrinis 
(fig. 33, Fr et G). Inversement, il est assez rare de voir les polli- 


nies se fusionner en une seule comme chez les Malaxidées. 

Dans sa forme la plus simple, la pollinie a la forme d’une 
virgule ou d’un ovoïde : Oberonia iridifolia (fig. 23, D). D’habi- 
tude cette structure se complique davantage, et la pollinie montre 


Fig. 113. — Pescatorea Kla- 
bochorum Rcue. f.; À fleur 
coupée longitudinalement ; 
d épaisissement du pétale 


médian; B pollinarium. 


de la pollinie, 
selon que l'Or- 
chidée est acro- 
tone ou basi- 
tone. Ces cau- 
dicules ne sont 
pas toujours vi- 
siblesau dehors; 
elles peuvent se 
cacher dans des 
de la 

Elles 


sillons 
pollinie. 


en plus une caudicule. Les caudicules se 
forment soit au sommet, soit à la base 


Fig. 114. — Vandopsis lisso- 
chiloides (GauD.) PrFiTz.; 
A fleur; 8 pollinarium. 


se mettent en rapport avec la masse adhésive, soit directement 
lorsqu'on vient à déplacer, si peu que ce soit, la masse adhésive, 
— tel est le cas de nombreuses Cattleyées où l'insecte visiteur 
provoque, en se retirant, le contact des 


caudicules et de la 
par 


Fig. 115. — Gramma- 
tophyllum speciosum 
BL.; A fleur, coupe 
longitudinale; 8 pol- 
linarium. 


l'intermédiaire 


masse adhésive — ; soit 
stylet, Notylia 
(fig. 83, c), Brassia bra- 
chiata (fig. 117, B, C, D), 
Phalaenopsis Schilleriana 


d’un 


(fig. 21, E, F); soit par 
un disque membraneux 
contractile, comme dans 
l'Orchis mascula. 

En général, il s'établit 
une sorte de balance- 
ment entre l’existence 
des caudicules et l’exis- 
tence du stylet. Quand 


Fig. 116. — Acanthe- 


bhippium javanicum 
BL.; À fleur; B polli- 
nies vues d'en haut: 
c vues de côté. 


les caudicules existent, le stylet fait défaut, et vice versa. Quand 
la partie libre des caudicules est grande, le stylet est nul. Cette 


bé 


— 139 — 
tendance n'a toutefois rien d’absolu; car on peut citer le polli- 
narium du Saccolabium giganteum (fig. 111, B), montrant à la fois 
un stylet et des pollinies longuement caudiculées. Il est assez 
rare de voir le stylet double, comme dans le Polyrrhiza funalis 
(fig. 27,1). 

La gradation dans la complication du pollinarium nous paraît 
être établie comme suit : 

1° Pollinies simples, directement insérées sur la masse adhésive. — 
Une manière d’être de ce pollinarium assez répandue est celle 
où la masse adhésive est par- 
ticulièrement 
large : Scutica- 
ria Steeler (fig. 
32,B), Galean- 
dra Devoniana 
(fig. 118, B). 

2° Pollinies 
insérées par des 
caudicules sur 
la masse adhé- 
sive, les caudi- 
cules pouvant 
être divergen- 
tes ou conver- 
gentes. 

3° Pollinies 


Fig.117.— Bras- 
sta  brachiata 
Loc.: A fleur: 
8 pollinarium vu 
de côté: c le 
même après cOn- 
traction du filet: 
D le même vu de 
face. 


avec caudicules 
placées en bas 
des pollinies et 
reliées à la mas- 
se adhésive par 
des disques con- 


Fig. 118. — À Galzandra Devoniana Loi: 
8 pollinarium; e Polystachia bracteosa 
Lor., fleur. 


tractiles (Sérapiadées). — Comme complication organique du 
pollinarium, cette troisième forme est un peu supérieure aux 
pollinies à caudicule directement reliée à la masse adhésive, et 
elle n’est pas aussi différenciée que les pollinariums à stylets. 

4° Pollinies insérées directement sur un stylet qui les relie à la 
masse adhésive. — En général dans ce dispositif, la partie 


saillante des caudicules est très courte ; les caudicules sont dans 
l’intérieur des pollinies. 

5° Pollinies reliées à un stylet par des caudicules, le stylet réunis- 
sant ensuite les pollinies à la masse adhésive. 

A tous les degrés, par atrophie partielle du système, nous 
pouvons constater l’absence de masse adhésive : ainsi, les Épiden- 
drées ont des pollinariums avec caudicules sans masse adhésive: 
le Cephalanihera grandiflora n’a ni caudicules ni masse adhésive; 
le pollen y reste pulvérulent. 

Le transport des pollinies, des anthères où elles se sont 
formées jusqu'à la région collectrice des organes femelles ou 
stigmate, est fait par les insectes. Les exemples de pollinisation 
directe sans le secours des insectes sont extrêmement rares. 

La fécondation des Orchidées est essentiellement une fécon- 
dation croisée, c'est-à-dire que le pollen d’une fleur ne féconde 
pas celle-ci, mais sert à féconder une autre fleur. Il suffit d’une 
petite différence dans l’époque de la maturation de l’anthère et 
du stigmate pour assurer ce résultat. Nous reviendrons plus loin 
sur cette fécondation des Orchidées, quand nous connaîtrons les 
formes de leurs fleurs et que nous pourrons apprécier plus exacte- 
ment la manière spéciale dont chacune d'elles est adaptée à la 
visite des insectes. 


c) LE PÉRIANTHE. — État moyen du périanthe considéré dans son 
ensemble. — I. Prenons d’abord comme type moyen du périanthe 
de l’Orchidée monandre, le périanthe du Cattleya intermedia 
(fig. 119). Nous y voyons trois pièces externes lancéolées, 
rétrécies à leur base. Elles sont épaisses, d’une teinte rose 
uniforme. Elles sont très écartées l’une de l’autre; leur sommet 
est réfléchi en arrière. Ce sont les pièces dites sépalaires, nom 
que nous acceptons parce qu’il nous permettra de les désigner 
nettement et rapidement, mais nous spécifions de nouveau très 
explicitement que ce mot n’entraîne pour nous aucune assimilation 
au calyce de la fleur des Dicotylédones. Le sépale antérieur de 
la fleur est dirigé en haut; les sépales postérieurs, à 120° du 
premier, s’infléchissent très légèrement vers le bas. Les deux 
pièces antérieures du verticille interne diffèrent peu des sépales : 
leur extrémité supérieure est moins effilée, leur rétrécissement 


basilaire moins brusque. Elles sont plus asymétriques, avec bord 


antérieur convexe, avec bord postérieur concave. Leur coloration 


GRAN, 


Fig, 119, — Cattleya intermedia 


est un peu plus vive que celle des sépales. Ces deux pétales 
latéraux sont d’ailleurs parfaitement symétriques l’un de l’autre, 
par rapport au plan antéro-postérieur de la fleur. La troisième 
pièce du verticille interne, le labelle, est grand, très différent des 
pétales latéraux et des sépales. Que le lecteur imagine une sorte 
de cornet, dont la pointe enserre exactement la base du gynostème, 
se renflant un peu en bosse à sa partie antérieure et s’évasant en 
une embouchure élargie à bord élégamment gauffré. La partie 
médiane du labelle est marquée par une macule pourpre, qui va 
en augmentant d'intensité, jusqu'aux bords du labelle. La teinte 
pourpre générale de cette partie du cornet est riche et veloutée, 
mais sa teinte est rendue plus belle encore par les ors et les 
stries qui partent du pied du gynostème et irradient de lanci- 
niantes fulgurations toute la longueur du labelle. Dans tous les 
Cattleya, le déroulement du labelle peut se faire aisément, et il 
présente alors aux yeux de l’observateur l’aspect d’une lame 
large et brillante, aux bords plus ou moins frangés. 

L'ensemble du labelle pointe en avant du plan des pièces de 
la fleur, et s’infléchit en bas. Sur une coupe longitudinale antéro- 
postérieure de cette fleur, nous verrions, à la base du labelle, 
entre lui et le gynostème, une petite cavité glandulaire qui 
s’enfonce plus ou moins dans le haut de l’ovaire. C’est une glande 
productrice du nectar. 

Le périanthe du Cattleya intermedia est donc très nettement 
zygomorphe et symétrique par rapport au plan antéro-postérieur 
de la fleur. Il en est de même des admirables fleurs du Caltleya 
labiata var. Mendelir (fig. 120). Cette zygomorphie est surtout 
accusée par la forme, la direction, la consistance et la répar- 
tition des couleurs du labelle. Les pétales latéraux contribuent 
un peu à cette zygomorphie par leur forme légèrement asymé- 
trique, par leur très légère inflexion vers le bas, et surtout 
par les petites oppositions qu’on relève entre ces pièces et 
les sépales latéraux. Ils sont légèrement différenciés par 
rapport à ceux-ci. Les sépales interviennent à peine dans la 
zygomorphie du périanthe; les sépales latéraux ou postérieurs 
sont à peine infléchis vers le bas, et l’inégalité signalée entre 
leurs deux bords est extrêmement faible. Le sépale antérieur 
n'intervient que par sa position. Au total, c'est surtout le labelle 


qui détermine la zygomorphie du périanthe; les cinq autres pièces 
n’interviennent que par une légère modification de leur direction, 


Fig, 120, — Catlleya labiata Los, var, Mendelii Rous. ra 


une légère asymêtrie de leur lame, une petite différenciation des 
pièces internes par rapport aux pièces externes. 


— 144 — 

IT. Prenons un second exemple de périanthe très répandu chez 
les Orchidées monandres, le périanthe de l’Orchis maculata que 
nous représentons de face (fig. 5, A) et que nous complétons par 
le profil de l’Himantoglossum hircinum (fig. 5, D). C’est le 
périanthe de nos Orchidées indigènes. Le sépale médian (sw) est 
relativement grand, bien symétrique, dirigé vers le haut. Les 
sépales latéraux (s/) sont assez fortement asymétriques, leur bord 
postérieur est fortement convexe un peu au-dessus de sa base, 
leur bord antérieur est droit, le sépale est aussi un peu relevé en 
haut. Vers leur pointe, les bords des sépales latéraux se réflé- 
chissent légèrement à leur face antérieure. Sépale médian et 
sépales latéraux sont marqués de taches 
brunes sur un fond roux clair. Les deux 
pétales latéraux (pl) sont deux lames lar- 
gement asymétriques, concaves vers le 
centre de la fleur ; leur bord postérieur 
est plus large que leur bord antérieur. Ils 
sont fortement relevés contre le sépale 
médian, qui les couvre comme le ferait une 
valve supérieure. Le labelle (pm) est une 
grande pièce triangulaire, nous montrant 
à sa base, contre la colonne, l'embouchure 
(spe) d’un grand éperon nectarifère. La 
lame du labelle est pincée en son milieu 
en une petite pointe à bords rabattus; 
d'où, à droite et à gauche, un sinus qui 
sépare la pointe des parties élargies de la 
lame labellaire. Le labelle présente des. 
taches brunes symétriquement disposées 


; ! sur un fond rose pâle. Ce labelle pend en 
reed bas. Vues de profil, surtout chez l'Himanto- 
a Nes ane et l’Aceras GE (Gg. 49); 
Hook. les pièces du périanthe sont réparties 
en deux groupes : un groupe inférieur, uniquement formé du 
labelle pendant comme une languette plus ou moins allongée; 
et un groupe supérieur, comprenant les cinq autres pièces rele- 
vées en haut et s’avançant en avant, formant une sorte de petit 


casque. Au labelle pend souvent un éperon plus ou moins long. 


CATTLEYA WARNERI 
CATTLEYA LABIATA, var. WARNER. 


Via — 

Dans ce second exemple, la zygomorphie du périanthe est 
surtout déterminée par la forme du labelle, par son éperon, par 
sa structure et son ornementation. Les pétales latéraux inter- 
viennent seulement par leur direction et une légère asymétrie de 
leur bord. Les sépales latéraux interviennent et par leur direction, 
et par leur asymétrie, et par leurs taches colorées. Le sépale 
médian contribue à la zygomorphie par sa taille plus grande et 
par ses taches colorées. Remarquons enfin 
le groupement des cinq pièces en un 
ensemble supérieur très nettement opposé 
au labelle, cet ensemble et le labelle étant 
fortement symétriques l’un et l’autre par 
rapport au plan antéro-postérieur de la 
fleur. 

La zygomorphie du périanthe des Orchi- 
dées monandres est donc essentiellement pie :22 — Huttonaea 
imprimée : par la forme, la structure, la pulchra Harv. 
direction et la coloration du labelle; pour une part moindre : 
par les pétales latéraux, par le sépale médian, et par le groupe- 
ment de ces cinq pièces par rapport au labelle. 

Connaissant l'état moyen du périanthe dans les deux formes 
les plus répandues que cet appareil 
présente chez les Orchidées monan- 
dres, jetons un rapide coup d'œil 
sur les modifications les plus sail- 


lantes dont ses diverses parties peu- 
vent être l'objet. Nous examinerons 
d’abord celles qui accentuent la 


zygomorphie, puis celles qui tendent à — 
au contraire à la faire disparaître. Fig. 123. — Sfenia pallida Loz..: 
E à : £ A fleur; 8 pollinarium; c une 
Modifications du sébale médian qui des pollinies coupée transver- 
accentuent la différenciation du périan-  S2lement. 
the. — La première, la plus importante, des modifications du 
sépale médian est son accroissement: tel est le cas des Pfero- 
stylis de la section Antennaea (fig. 6, À, sm), où le sépale médian 
affecte la forme d'une grosse coque ou spathe, qui cache presque 
complètement les pétales latéraux (47). L'opposition entre ce 


‘grand sépale médian et les sépales latéraux filiformes (sl), pliés 


10 


—# 146 — 


à angle obtus, est ici extrêmement forte. Dans le Disa megaceras 
(fig. 121, D), outre l'ampleur du sépale médian et sa forme en 
bateau ou en capuchon, nous voyons intervenir la production 
d’un grand éperon dorsal, qui imprime à l'ensemble de la fleur 
une certaine ressemblance 
avec celle des Aconits. Chez 
le Cryptostylis longifolia, le 
sépale médian dirigéen bas, 
doit l’accentuation qu'il im- 
prime à la zygomorphie de 
la fleur, plus à sa forme qu’à 
ses dimensions. Dans cet 
exemple, le sépale médian 
est devenu une sorte de 
cornet triangulaire plat, 
très effilé, rigide, très diffé- 
rent des sépales latéraux et 
Fig. 124. — Calanthe (Preptanthe Reus. f.) deS pétales latéraux, qui 
vestiis WaLL. sont ici filiformes. 

A l'encontre du sépale médian des Pterostylis qui prend un 
développement énorme, celui du rarissime Huttonaea pulchra 
(fig. 122), devient beaucoup plus petit que les sépales latéraux, et 
prend la forme d’une fine lancette dirigée en haut. C’est alors 
par diminution de la taille, en même 
temps que par une 
configuration  spé- 
ciale, que le sépale 
médian se différencie 
des autres pièces du 
périanthe, et accentue 
en même temps la dif- 
férenciation de la 
fleur. 

Modifications des Sé- Fig. 126. — Lima- 


Fig. 125. — Séanhopeastrum 1 L 
ecornutum Rcxs. f. pales latéraux qui ac- FOGES FOSER UE 
centuent la différenciation du périanthe. — C’est surtout par la 


direction qu'ils prennent dans la fleur épanouie que les sépales 
latéraux accentuent la zygomorphie florale, et par suite la 


A, — 
différenciation du périanthe. Tantôt, ils se relèvent dans le plan 
vertical où sont étalées toutes les 
pièces de la fleur : Séenia pallida 
(fig. 123, A), Calanthe veratrifolia 
(fig. 22, 8), C. (Preptanthe) vestita 
(fig. 124), Stanhopeastrum ecornu- 
tum (fig. 125), Calypso boreals 
(fig. 209); tantôt, au contraire, ils 
s’abaissent vers le bas et se rap- 
prochent du labelle, formant ainsi 
un groupe de trois pièces opposé 

à un groupe supérieur composé du + RTE dd Les 
sépale médian et des pétales laté-  c, D pollinarium. 

raux : telles sont les fleurs du Limaïtodes rosea (fig. 126) et du 
Brassia brachiata (fig. 117). Dans le Vanda 
tricolor (fig. 127, A), dont les pièces du 
périanthe sont étalées dans un plan incliné 
d'environ 45 degrés sur l'horizon, les sépa- 
les latéraux semblables 
comme forme au sépale 
médian, viennent en 
avant et en bas enser- 
rer le gobelet du labelle, 
en même temps que le 
sépale médian se dirige 
en arrière et se relève 
légèrement. Là encore, 
ce n’est que la direction 
des sépales latéraux qui 
souligne lazygomorphie, 
et non une spécialisation 
de forme. 


De nombreuses fleurs 


Fig. 129. — A Sfanho- 
d'Orchis doivent la dif- p:a blatyceras Lor.: 
z aurs D B S. oculata Loi. 
férenciation de leur pÉé- a fleur: 5 coupe lon- 


Ï à Nr itudinale; © point 
thera montana Sca.; tianthe, à la fois à la Frtninale P 


Fig. 128. — Platan- 


d'attache de l'épichi- 
direction des sépales la- lium: » pollinarium. 


téraux et à une légère différenciation de leur forme : l'Orchis 


A fleur; 8 pollinie. 


— 148 — 


maculata (fig. 5, A), le Platanthera montana (fig. 128, A) et surtout 
l'Anœctochilus Reinwardtii (fig. 47, E), sont dans ce cas. 

La fleur des Séanhopea : (S. platyceras, S. Wardii, fig. 129 et 
fig. 130), nous montre les sépales latéraux relevés en haut, alors 
que le sépale médian un peu plus étroit, le labelle et la colonne 
pincée à sa base, pendent vers le bas. Cette disposition est très 
analogue à celle 
de la fleur du 
Coryanthes ma- 

culata(fig.82,A), 
qui rejette d’un 
côtéses sépales, 
alors que son 
volumineux la- 
belle semble 
faire contre- 
poids de l’autre 
côté. Dans ce 
Coryanthes, les 
sépales latéraux 
très amples ont 
un côté plus fai- 
ble, leur côté 
antérieur sur le 
diagramme flo- 
ral, et un côté 
beaucoup plus 
fort, à convexité 
très accusée, 
c’est leur bord 
labellaire. Il y a 
dans le Coryan- 


Fig. 130. — Sfanhopea Wardii Loz. 


thes maculata une différenciation de la forme des sépales latéraux 
accentuant la zygomorphie imprimée et par leur direction et par 
 Jeur dimension plus grande. L’Huttonaea pulchra (fig. 122), le 
Disa grandiflora (fig. 121, A), nous montrent aussi l'accentuation 
de la différenciation florale par les sépales latéraux, ceux-ci étant 
plus grands que le sépale médian, et d’une forme différente de la 


=. L2 " 


— 149 — 
sienne. Ils diffèrent aussi profondément des pétales latéraux dans 
ces deux exemples. Remarquons en passant que chez le Disa 
grandiflora, comme chez le Cybrifedium japonicum (fg. 13, B), 
nous voyons les sépales latéraux accentuer la zygomorphie florale, 
en soudant leurs bords postérieurs. 

Les sépales latéraux accentuent la zygomorphie en devenant 
très grêles, filiformes, chez le Corysanthes picta (fig. 31, A). Chezle 
Caleana major (fig. 98), ces sépales latéraux (s/), à l’état de petites 
lanières, accompagnent en haut de la fleur le singulier labelle (fm), 
si remarquable par sa forme et son irritabilité. De même dans le 


Fig. 131. — Vanda cacrulea. 


Diuris elongata (fig. 100), les sépales latéraux styliformes (s/) 
accompagnent le labelle, et pendent à droite et à gauche de 
celui-ci en produisant le plus singulier effet. 

Dans les Pleurothallidées, dont la fleur est caractérisée par la 
prédominance des pièces sépalaires, nous voyons parfois les 
sépales latéraux devenir coalescents par leurs bords postérieurs et 


constituer une valve inférieure très grande, comparable à celle 
du Paphiopedium barbatum (fig. 12). Le Pleurothallis velaticaulis 


— 150 — 


(fig. 35, F) et le Restrepia antennifera (fig. 35, G) nous montrent 
cette manière d’être. 

L'opposition de la valve sépalaire inférieure et de la valve sépa- 
laire supérieure se conserve même quand la concrescence de toutes 
les pièces sépalaires est poussée très loin, comme dans le bouton 


Fig. 132. — Dendrobium nobile. 
aristolochéen du Cryptophoranthus Dayanus (fig. 178). Cette fleur 
si singulière ne s’ouvre que par deux boutonnières latérales, 
placées le long de la ligne de jonction 
des deux valves. 

Dans le Schlimia trifida (fig. 179), 
les deux sépales latéraux sont soudés 
par leurs bords postérieurs, en un 
grand casque placé en haut de la 
fleur. Cette pièce, fortement bombée 
à son attache sur l'ovaire, fait 
penser à une sorte de grand labelle, 
alors que le véritable labelle est com- 
Fig. . — Dendrobium nobile NE eo per es ete 

LoL.; A coupe transversale: Lorsque le gynostème se prolonge 

PA EE inférieurement en pied, nous con- 

l'anthère; D pollinies. statons très fréquemment que les 
sépales latéraux contribuent pour une plus grande part à la 
différenciation florale. C’est d’abord en provoquant une forme 


= (2, 


à 


différente des deux bords des sépales latéraux, comme chez 
les Polystachiä bracteosa (fig. 118, c) et Dendrobium nobile 
(fig. 132 et 133). Chez l'Acanthephippium javanicum (fig. 116, A), 
les sépales latéraux ainsi formés, largement coalescents avec 
le pied du gynostème, se soudent par leur bord postérieur: 
mais, à quelque distance de leur base, ils réservent une 
boutonnière basilaire, par laquelle pointe faiblement un éperon 
pédieux. 

Le pied grandissant, les sépales latéraux sont exclusivement 
insérés sur ce pied(r). Dans la fleur du Gongora tricolor (fig. 92,4), 
les deux sépales latéraux (s/) sont de grandes pièces triangulaires, 
élégamment tachetées, rejetées en arrière. Elles sont complète- 
ment insérées sur le pied. L’Aerides Vandarum (fig. 93), l’Aerides 
mulhiflorum (fig. 210) sont dans le même cas; les pétales laté- 
raux accompagnent même sur le pied du gynostème les sépales 
latéraux. Lorsque l'insertion des sépales latéraux sur le pied 
est moins large, nous avons des dispositifs comme celui du 
Govenia liliacea (fig. 87, F), remarquable par ses deux sépales 
latéraux asymétriques pendants à l'extrémité du pied, et comme 
celui du Drymoda picta (fig. 10) et des Monomeria. Dans ces deux 
derniers genres, les sépales latéraux très grands, à base rétrécie, 
sont éloignés à très grande distance de la colonne, par un pied 
énorme. 

Lorsque les sépales latéraux sont concrescents par leur bord 
postérieur, la saillie qu'ils forment a reçu 
le nom de menton. Il y a à cet égard de 
nombreuses variantes. Une des formes les 
plus curieuses de cette manière d’être est 
celle qu’on rencontre dans quelques Ionop- 
sidées, Comparettia (fig. 77), Plectrophora, 
Diadenium, Chaenanthe. Dans le Chae- 

2 Fig. 134. — Chacnanthe 
nanthe Barkeri (fig. 134), les sépales laté-  Barkeri Loz.: à fleur: 
raux, très asymétriques, sont coalescents  ? P°llinariun. 
par leurs bords postérieurs. Le pied est coalescent avec le 
menton. Il en résulte une grande valve sépalaire inférieure en 


(1) Les sépales latéraux sont soudés en tube chez les Cryptoglotiis et les 
Anthogonium. 


— 152 — 


forme de bec ou de cuilleron, présentant au milieu une forte 
dépression, qui donne à l’ensemble (s/) l’aspect d'un de ces 


- Fig. 135. — Renanthera coccinea Lour. 


bonnets à visière ou de ces 
chaperons que portaient 
autrefois les communiers 
flamands. Dans cette poche, 
descend non-seulement l’in- 
sertion du labelle, mais 
encore les insertions des 
pétales latéraux. Chez le 
Comparettin  macroplectron 
(fg. 77), la forme des sépa- 
les latéraux se complique 
encore d'un long et mince 
éperon, Ja descente des 
pétales latéraux y est moins 
accusée que chez les Chae- 
nanthe. 

Un assez petit nombre 
d’Orchidées ont la diffé- 
renciation de leur périanthe 


accentuée par des sépales latéraux éperonnés. On peut citer 


Fig. 136. — Ponthieva 


comme exemple les Disperis et surtout le 
Calanthidium (fig. 174). 

Modifications des pétales latéraux qui 
accentuent la difjérenciation du périanthe. — 
L'influence des pétales latéraux sur la 
forme du périanthe des Orchidées monan- 
dres est généralement assez limitée. Ils 
diffèrent peu des sépales latéraux. Ce 
sont surtout des différences de colora- 
tion, de direction, de largeur, qui se ren- 
contrent quand les pièces interviennent 
plus efficacement pour accentuer la diffé- 


maculata Loi.: Afleur: renciation. Les pétales latéraux se rédui- 


B gynostème et labelle 
(pm); a anthère; c pol- 


sent à l’état de languettes étroites chez le 


linarium. Coryanthes maculata (fig. 82, À), le Cir- 
rhaea dependens (fig. 97, A), le Gongora tricolor (fig. 92, A), le 


à DE sn ét 


es — 
Caleana major (fig. 98). Ce sont des filaments grêles chez le 
Corysanthes picta (fig. 31, A). C’est encore par leur réduction à 
l’état d'écailles minuscules, triangulaires ou lancéolées, qu’ils 
interviennent dans le périanthe plus différencié des Drymoda 
picta (fig. 10), Bulbophyllum Careyanum (fig. 52, c), Megacli- 


n 


| 
| 
| 


Fig. 137. — Phalaenopsis amabilis Rcus., fleur. 


nium maximum (fig. 62, B), lone paleacea (fig. 62, c). Nous 
avons vu les sépales latéraux accentuer seulement la zygomor- 
phie du périanthe, en se relevant fortement le long du labelle, 
d’où la formation d’un groupe supérieur de trois pièces, dans le 
Limatodes rosea (Ag. 126), et dans le Brassia brachiata (fig. 117,4). 
Dans l'Haemaria discolor (fig. 102, A, B), les pétales latéraux, 


rapprochés aussi du sépale médian, sont concrescents avec 
lui en une grande valve, qui est inférieure dans cette fleur. 

L'opposition de forme entre les pétales latéraux et les sépales 
postérieurs est-elle très accusée, la différenciation du périanthe 
est fortement accentuée. Le Renanthera coccinea (fig. 135) nous 
présente sous ce rapport une forme intéressante. Tandis que 
le sépale médian et les pétales latéraux affectent une forme 
linéaire-spathulée presque identique, les sépales latéraux clavi- 
culés, oblongs, sont beaucoup plus grands et donnent à la fleur 
tout son caractère. Chez l’Hutionaea pulchra (fig. 122), les deux 
pétales latéraux sont deux grandes lames longuement onguicu- 
lées. La partie élargie de leur limbe est élégamment frangée 
sur le bord : elle est fortement déprimée au centre, de telle 
sorte qu'elle paraît porter un gros gobelet. Cette forme des 
pétales latéraux, opposée à celle des larges sépales postérieurs, 
qui sont des valves triangulaires, intervient pour une grande 
part dans la physionomie de cette étrange fleur. 

L'insertion des pétales latéraux, lorsqu'elle s’avance sur le 
pied du gynostème, accentue beaucoup la Zzygomorphie du 
périanthe et sa différenciation : tel est le cas des Aerides, en 
particulier de l’Aerides Vandarum (fig. 03), du Chaenanthe 
Barkeri (fig. 134, A) et des genres voisins, où l'insertion des 
pétales latéraux descend entièrement dans la poche formée par 
les sépales postérieurs. L'insertion des pétales latéraux du Diuris 
elongata (fig. 100, A) est tout autre; très spéciale en son genre, 
elle contribue fortement à la zygomorphie de la fleur. Les deux 
pétales latéraux sont de petites lames foliacées, presque symé- 
triques, rétrécies à la base, avec nervures parallèles : elles sont 
plantées sur le bord d'une pièce triangulaire déprimée, dont la 
pointe représente le sépale médian. Le très curieux Ponthieva 
maculata (fig. 136, A, B), du Vénézuéla, qui est quelquefois cul- 
tivé en Europe, nous montre encore une différenciation pro- 
fonde, dépendant de l'insertion : les trois pétales sont attachés 
au sommet d’une longue colonne, isolant le verticille interne du 
périanthe, de son verticille sépalaire à très grandes pièces val- 
vaires, ciliées sur les bords. La différenciation des deux verti- 
cilles est donc très accusée, et leur séparation poussée à un 
point que nous ne rencontrons pas chez les Monocotylédones, 


sans toutefois que pour cela il y ait un calice et une corolle. 
Par contre, si on peut dire que la colonne est fortement allongée 
entre les deux verticilles du périanthe, au-dessus des pétales le 
gynostème est remarquablement court; ses pièces sont en 
quelque sorte étalées dans le plan d'insertion des pétales. Les 
pétales latéraux sont deux lamelles asymétriques, à bord anté- 
rieur droit, à bord postérieur bombé, pédicellées, rapprochées 
l’une de l’autre exactement au-dessus du sépale médian. Enfin 
dans cette fleur, déjà si particulière, le sépale médian et les 
pétales latéraux sont dirigés en bas, au lieu d’être placés en 
haut. 

Modifications du labelle qui accentuent la différenciation du 
périanthe. — Étant donné que c’est essentiellement le labelle qui 
imprime au périanthe de l’Orchidée 
monandre sa différenciation, on 
conçoit que toute modification un 
peu importante de cet organe va 
retentir fortement sur cette diffé- 
renciation et sur la zygomorphie 
du périanthe. Tout changement du 
labelle modifie la configuration de 
la fleur. Aussi importe-t-il de s’y 
arrêter plus longuement; et après 
avoir étudié les formes où le labelle 
intervient seul pour marquer la De Ce — Corte ral 
différenciation du périanthe et sa  BL.; « fleur; 8 gynostème; c polli- 
zygomorphie (I), nous examinerons pu 
successivement les labelles de petite dimension (II), ceux à éperon 
(ID), les rapports du labelle avec le gynostème (IV), l’articu- 
lation du labelle (V}), et nous examinerons en terminant ces 
labelles surprenants, bizarres, étranges, aux diverses régions 
différenciées (VI). 

I. Nous voyons le labelle intervenir presque seul pour indiquer 
la différenciation du périanthe et sa zygomorphie dans le labelle 
en entonnoir des Caïtleya (fig. 119 et 120) et dans le labelle en 
languette, avec ou sans éperon, de nombreuses fleurs à forme 
d’Orchis. De même dans l’Oberonia iridifolia, le labelle (fg.23,B), 
courbé en gouttière, à bords lobés et frangés, entoure la face 


— 156 — 


postérieure du gynostème et pointe seul en l’air; alors que les 
autres pièces du périanthe, toutes semblables, épaisses, charnues, 
sont rabattues en bas sur l’ovaire. | 

. Chez les Phalaenopsis amabilis (fig. 137) et Siuartiana (fig. 39), 
le labelle en massue est de même la seule pièce différenciée qui 
démontre la zygomorphie du périanthe; c’est à peine si les 


pétales latéraux, un peu plus petits que les sépales, y contribuent 
tant soit peu. Il en est de même chez le Vanda tricolor (fig. 127, A), 
où le labelle, très différencié comme forme, montre un gobelet 
basilaire, à la partie antérieure duquel s’avance une lamelle 
gaufrée et bifide. Les Notylia bipartita (fig. 83, À) et Corymbis vera- 


trifolia (fig. 138, A) n'ont d’autre indication de zygomorphie dans 
leur périanthe, le premier que son labelle en lancette qui paraît 
former une pièce isolée entre le gynostème et un périanthe 
simple, régulier, de cinq pièces, le second qu'un labelle foliacé 
à peine un peu plus grand que les autres pièces du périanthe. On 
pourrait multiplier le nombre de ces exemples. Ceux-ci suffisent 
à faire bien comprendre le fait que j’ai voulu mettre en relief. 

II. Dans tous ces exemples, sauf peut-être dans celui du 
Notylia bipartita, le labelle est la plus grande des pièces du 
périanthe. Cette règle n’est pas générale : il est peu d’orchido- 


Fig. 140. — Angraëcum (Listrostachys Rcus. f.) caudaium Loi. 


philes qui n’aient vu fleurir le Disa grandiflora (fig. 121, A); or 
dans cette fleur éclatante, le labelle très différencié est réduit 
à une très petite lancette. Cette réduction du labelle à une 
petite pièce devient même la règle chez les Pleurothallidées, 
où les pièces sépalaires sont remarquables par leur très grande 
taille relative. Rappelons encore à propos de l’insignifiance 
du labelle, le Renanthera coccinea (fig. 135), l'Isochilus linearis 
(fig. 60; 8) et l'Ada aurantiaca (fig. 139). Dans ces deux dernières 
espèces, les sépales redressés donnent à la fleur une allure 
bromélienne. 


— 158 — 


IIT. Le labelle contribue souvent à la différenciation du 
périanthe, en présentant un éperon. L'Angraecum (Macroplec- 
trum) sesquipedale (fig. 18) en est l'exemple classique; l’Angrae- 
cum (Listrostachys Rchb.) caudatum Ldl. (fig. 140), l'exemple le 
plus original. Dans le 
premier, le labelle a la 
même forme que les 
autres pièces du périan- 
the; dans le second, il 
\ est à peine un peu plus 
F7 pn grand qu’elles; mais à 


Fig. 141. — Sophronitis violacea LoL.; À fleur; : 
B coupe de la fleur; c gynostème vu de face: sa base, il nous montre 
p gynostème vu de derrière. un éperon qui peut dé- 


passer o"40 de longueur. Cet éperon est naturellement nec- 
tarifère, et sa longueur même nous révèle que les agents 
inconscients de la fécondation de ces espèces seront des 
papillons à très longue trompe. Les Habenaria du Brésil 
(H. longicauda(1) p. ex.), ont égale- 
ment de fort longs éperons. Tous 
ceux qui ont botanisé quelque peu 
connaissent les éperons du labelle 
de nos Orchis, du Platanthera mon- 
tana (fig. 128, A). Ces éperons dépen- 
dent exclusivement du labelle; le 


pied du gynostème ne prend aucune 
Fig.142.— Leptotes bicolor Lor.; bart à leur formation. Au contraire, 

A fleur: B coupe du gynostème 2 . 

et de la base de labelle: cgy- dans le Phajus Blumei (fig. 85), 

nostème vu de face; » pollinies. €£ surtout dans l’Aerides Vandarum 
(fig. 93), le pied intervient en même temps que le labelle dans 
la formation de ces éperons. Chez l’Epidendrum ciliare (fig. 81,4), 
le labelle étant longuement adhérent à la face postérieure du 
gynostème, l'éperon labellaire n’est pas visible extérieurement ; 
il demeure caché dans l’épaisseur des parois de l’ovaire (8, asp). 
Cet éperon axial accentue la différenciation de la fleur au moins 
autant que l'éperon des Orchis. C’est le développement d’un 


(x) Cette espèce présente souvent un éperon dépassant om25. (Cf. CoGniaux, 
Orchidées du Brésil, I, p. 34.) 


on — 
dispositif dont les Cattleya nous montrent l’amorce. Dans le 
Sophronitis violacea (fig. 141) et le Leptotes bicolor (fig. 142), 
l'éperon axial se renfle en une sorte d’outre (B, asp) qui forme 
saillie à la face postérieure de l'ovaire. 

Il est rare de voir le labelle présenter deux éperons symétriques. 
On en cite pourtant quelques exemples; tels sont les deux courts 
éperons du Corysanthes picta (fig. 31), les deux longs éperons du 
labelle du Satyrium nepalense (fig. 181, D). Dans 
les Comparettia, nous trouvons une forme plus 
bizarre encore : le labelle forme 


deux éperons, et ceux-ci se trouvent = S3 Ft )\ 


enfermés dans l’éperon formé par ! 
les sépales latéraux, de manière 
à ne pouvoir être vus qu'après |= 
ablation decelui-ci (fig.77,Bet 143). gps 
Cette structure orchidacéenne rap- F4 | 
pelle ce que l’on voit dans les Aco- 
nits et d’autres Renonculacées. Fig. 143. — Labelle à double éperon 
IV. Les rapports du labelle avec du Compareitia falcata Loc. 
le gynostème, qui interviennent pour une part importante dans 
la zygomorphie du périanthe, interviennent par cela même dans 
la différenciation de cet organe. Quand le gynostème n’a pas de 
pied, ou bien le labelle s’écarte directe- 
ment du gynostème : Schomburgkia tibici- 
nis, p. ex. (fig. 200), laissant celui-ci 
complètement à découvert, ou bien au 
contraire le labelle se dresse parallèle- 
ment à la colonne; il peut même adhérer 
avec elle plus ou moins longuement, 
comme dans certains Cattleya et surtout 
comme dans l’Epidendruwm ciliare(fig.81), 
qui montre cette concrescence poussée à Fig. 144. — Paphinia cris- 
un très haut degré. Lorsque legynostème #4 7-?7 SP EN eps 
est pourvu d’un prolongement pédial, cette direction du labelle 
par rapport au gynostème a encore plus d’influence, soit que 
le labelle s’écarte du gynostème (Eriopsis rutidobulbon, fig. 90, B), 
soit qu’il essaie de l'embrasser(Cyréopodium Andersont,fig.87, E), 
soit même qu'il chemine parallèlement au pied et au gynostème 


— 160 — 


(Govenia liliacea, fig. 87, &), en devenant même parfois plus ou 
moins longuement coalescent avec eux. Nous avons vu le pied 
excessivement allongé du Drymoda picta (fig. 10) et celui de 
l’Aerides Vandarum (fig. 93). 

V. Le labelle s'attache au gynostème ou à son pied soit direc- 
tement, soit par une sorte d'articulation, qui marque la limite des 
deux organes. 

C’est un caractère de certaines tribus, que ce labelle attaché à 
la colonne par une articulation; telles sont les Cymbidinées, les 
Zygopétalinées, les Lycastinées, les Cyrtopodinées. Cette articu- 
lation n’est nullement un obstacle aux diverses directions que le 
labelle peut prendre par rapport au gynostème, comme le montre 
la comparaison des trois figures (fig, 183, 8o, 144) qui repré- 
sentent une coupe antéro-postérieure dans la fleur du Lycaste 
Cobbiana, du Batemania Colleyi et du Paphinia cristata. Pour 
rétablir cette dernière dans la position où la nature nous la 
montre, il faut mettre son labelle en haut, et non en bas. 

Cette articulation du labelle avec le gynostème peut déterminer 
une très grande mobilité du pétale postérieur. Chez le Bulbophyl- 
lum Schmidtianum (fig. 145), par exemple, 
une coupe antéro-postérieure de la fleur nous 
montre que le labelle (f»#) est une petite 
pièce charnue, en forme de langue très épaisse 
à sa base, beaucoup plus mince au sommet. 

ÿ'-S Cette pièce est attachée au bord supérieur 

Ne Re du pied évasé en cupule (f), par une petite 
num RCHB. f. lame étroite d’une minceur extrême; de là 
vient la mobilité excessive du labelle. Sans cesse en mouvement, 
cette languette imprime à la fleur une physionomie étrange : on 


dirait un de ces petits monstres, engendrés par l’imagination 
des Chinois, qui tire constamment la langue pour la retracter 
aussitôt. Le Megaclinium maximum (fig. 62, B, pm) nous présente 
le même caractère. 

VI. La différenciation des régions du labelle est un sujet 
d’étonnement pour tous les amateurs à leur début. | 

Dans les Gongorinées, les Lycastinées et dans quelques Aéri- 
dées, Aerides Vandarum(fig.93), Phalaenopsis Siuartiana(fig.39), le 
labelle différencie ses diverses régions à un très haut degré. Les 


Œ 
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— 161 — 


orchidographes ont créé toute une nomenclature pour désigner 
les diverses parties de ces labelles si complexes. Que ce soit 
dans l'Acineta Barkeri (fig. 146) ou 
dans le Séanhopez Wardii(fig. 147), 
le Iabelle se montre divisé en deux 
parties séparées par un étrangle- 
ment. La région inférieure, basi- 
laire, qui s'attache au pied, a reçu 
le nom d’hypochilium (Gg. 147, 1); 
la région supérieure, celui d’epi- 
chilium. Lorsque la liaison de 
l’hypochilium à l’epichilium se fait ne Phéhei Ti - 
par une partie assez étendue, on coupe; pm epichiliam: x pleuridies; 
donne le nom de mesochilium à ‘2e charnx; } bypochiliun. 
cette région médiane. Le mesochilium ou, quand il n’est pas 


Fig. 147. — Gynostème et labelle du Sfanhopes Wardii; 
1 hypochilium; 2 mesochiliam; 3 epichilium. 
distinct, l’hypochilium, montre souvent une forte saillie qu’on 
appelle disque ou plateau, Callus, Plaite 
des Allemands. 

L’hypochilium est souvent concave, 
en forme de bassin ou de gobelet. L’epi- 
chilium est une lamelle souvent trilobée. 

Lorsque le labelle, comme celui du pis, 145. — Par ieria pen- 
bizarre Peristeria pendula (fig. 148), ee Rd ire 
présente des expansions très indépen-  chilium; pm mesochiliun: 
dantes qui semblent être des appen- ” “sm: 6 gs ere 


dices marginaux du labelle, on les nomme pleuridies (x). Les 
11 


— 162 — 


homologies admises par l’application de ces noms aux diverses 
parties du labelle sont souvent fort contestables (1). Ainsi dans 
l’Acineta Barkeri (fig. 146), elles dépendent de la base du meso- 
chilium. Dans le Sfanhopea platyceras (fig. 129, A), les pleu- 
ridies apparaissent comme une 
dépendance de la partie supérieure 
du mesochilium; elles sont nette 
ment supérieures au plateau. Dans 
le Peristeria pendula (fig. 148), elles 
sont insérées au milieu de l’hypo- 
chilium. Enfin, la fleur du Coryanthes 
maculata (fig. 82), les montre à la 
base même de l'onglet de l’hypo- 
chilium. Chez le Cirrhæa dependens 
(fig. 97, A), elles sont à la base même 
du labelle indivis. 

Lorsque l’attache de l’epichilium 
et de l’hypochilium se fait par une 
lame très min- pm. 
ce, l’epichilium sl 


acquiert une ex- 
trême mobilité; 
tel est le cas du {| 
Pholidota articu- 2% : 
lata (fig. 149). 
Chez quelques Fig. 150. — Glossodia 
Piérpsiyiie, le Pare ES 
pichilium mo- latérales; c pièce laté- 
Fig. 149. — Pholidota articulata bileestirritable. Minor > pièce 

Loc.; À port; 8 fleur. Chez le Stenia rale du G.majorR.BRr. 
pallida (fig. 123, A), le labelle se réduit à sa partie hypochilienne, 
ayant la forme d'un gobelet échancré en avant. Le labelle de 


l’'Haemaria discolor (fig. 122), est remarquable par son asymétrie: 


, . : Ty . a 
(1) En l’état actuel de la science, il faut considérer ces dénominations 
comme approchées seulement, et ne pas y voir des homologies établies; 
malheureusement on a recours dans les parties un peu délicates et un peu em- 


brouillées de la classification des Orchidées, aux caractères que fournissent 
ces organes. : : 


— 163 — 


le labelle bossué à sa base comme il arrive si souvent chez les 
Physurées, est courbé sur le coté gauche; il se termine par 
un épichilium d’une mobilité extrême. 

Un autre groupe d'Orchidées, les Glossidia G. Brunonis 
(Gg. 150, B), G. major (fig. 150, D) et G. minor (fig. 150, c) 
nous montrent un labelle composé de trois pièces : une pièce 
médiane mince, en forme de languette, et deux pièces latérales 
symétriques l’une de l’autre, bossuées, concaves à leur base sur 
leur face marginale. Est-ce une différenciation des appendices 
du plateau labellaire semblable à celle des genres voisins, Bur- 
nettia, Caladenia, Chiloglottis ? La morphologie de ces pièces ne 
nous paraît pas définitivement établie. 

Différenciation du périanthe par des pièces accessoires. — Le 
périanthe du. Zygostates cornuta (fig. 78) doit sa différenciation un 
peu à la forme de ses pétales latéraux onguiculés, à bords légère- 
ment dentés. Quant à son pétale médian courbé en valve (pm), 
c’est un labelle extrêmement simple qui nous donne l'impression 
d'une pièce ayant perdu ses caractères différentiels. Ce périanthe 
est très remarquable, car nous y trouvons des pièces nouvelles : 
trois lames supplémentaires des plus singulières. Deux de ces 


- pièces (x) sont latérales, symétriques; ce sont des languettes à 


extrémité un peu élargie, irrégulière. Les botanistes voient dans 
ces languettes des staminodes correspondant aux étamines laté- 
rales, postérieures, du verticille externe. L’appendice médian plus 
épais (x), courbé en corne, est superposé au labelle. Ils y voient 
aussi un staminode correspondant à l’étamine postérieure médiane 
du verticelle interne. Cette interprétation ne nous paraît pas abso- 
lument satisfaisante. Si l’on remarque la présence d’un disque 
labellaire bien différencié, bilobé, chez l'Ornithocephalus grandi- 
florus (fig. 79), Odontoglossée à rostellum prolongé en béc 
comme le Zygostates, n’est-il pas plus naturel de voir dans cette 
pièce médiane du Zygostates au moins un plateau labellaire diffé- 
rencié, devenu indépendant ? Quoi qu’il en soit, la zygomorphie 
du périanthe se trouve ici déterminée d’une façon très particulière 
par l'intervention de lamelles supplémentaires, intercalées dans 
la partie postérieure de la fleur, entre le verticille interne et le 
gynostème. | 
Disparition de la différenciation des pièces dupérianth e. — Jusqu'ici, 


— 164 — 


nous avons étudié successivement les modifications qui accentuent 
la différenciation des pièces du périanthe; il nous reste à étudier 
les modifications qui tendent à faire disparaître cette différencia- 
tion. — Toutes choses égales, lorsque dans un périanthe toutes 
les pièces, à l’exception du labelle, deviennent semblables et 
s’écartent également les unes des autres, la différenciation est 
certainement moins accusée. Les fleurs du Renanthera (fig. 135), 
celles des Dracrium bicornutum (fig. 152), sont dans ce cas. Cet 
effacement de la différenciation est surtout sensible quand le 
labelle reste très simple dans sa re, comme chez le Corymbis 
veratrifolia (fig. 138, A), ou 
comme dans l’une des di- 
verses formes de la fleur 
staminée du Cycnoches ven- 
tricosum (fig. 151). 

La disparition de la zygo- 
morphie du périanthe peut 
être poussée plus loin. Dans 
la fleur du Thelymitra ixioides 
(fig. 99, A), les six pièces du 
périanthe sont semblables - 
entre elles; elles ne diffèrent 
que par leur position : ce 
sont six lames triangulaires, 
larges, un peu rétrécies à la 
base, étalées dans un plan à 
6o° les unes des autres. Ilen 
Fig. 151. — Cycnoches ventricosum Bar, résulte une fleur très ou- 

Eee verte. La différenciation du 
périanthe et sa zygomorphie ont donc ici totalement disparu. 
C’est bien, en effet, d’une disparition de caractère qu'il s’agit dans 
cette fleur; car, d’une part, son gynostème est aussi profondé- 
ment différencié que celui des autres Orchidées, et d’autre part 
un genre très voisin, Epiblema grandiflorum, a une fleur dont le 
périanthe est encore rendu faiblement zygomorphe par son labelle 
onguiculé. 

Chez les Telipogon (fig. 96, A), la zygomorphie du périanthe 
disparaît, mais non la différenciation de ses deux verticilles. Le 


périanthe, très ouvert, montre six pièces étalées dans un plan, 
à 60° les unes des autres; le pétale médian est peut-être très 
légèrement plus grand que les pétales latéraux. Les pétales sont 
plus grands que les sépales. Ils sont lancéolés, alors que les 
sépales sont triangulaires ; ils sont colorés, alors que les sépales 
sont verts. Ce périanthe à peine zygomorphe nous montre une 
différenciation très intéressante de ses deux verticilles : l’externe, 
devenu calycinal, l’interne corollin. L'ensemble de la fleur a été 
comparé, avec quelque raison, à une fleur de Tradescantia; mais 
il convient d'ajouter à un Tradescantia à ovaire infère. 

Dans les fleurs où la différenciation des pièces du périanthe 
détermine la production de très grands sépales, la zygomorphie 
du périanthe semble souvent s'affaiblir beaucoup, et par là 
atténue grandement la différenciation du périanthe; surtout 
lorsque les sépales se relè- 
vent simultanément en 
haut, et plus encore quand 


ces sépalaires entre elles. 
Chez les Pleurothallidées, 
par exemple, les pièces 
sépalaires sont énormes, 
eu égard aux pièces péta- 
laires, et nous trouvons 
toutes les transitions 7 
entre des fleurs à sépales Fig. 152. — Diacrium bicornutum BNTH. 

largement ouverts, comme celles des Ociomeria (fig. 35 C, D), et 


le Physosiphon Loddigesii (fig. 35, M), par exemple, où ils sont 
coalescents en un long tube. Les Masdevallia (fig. 35, H, 1) nous 
montrent un tube sépalaire court, que terminent trois grandes 
valves libres, remarquables souvent par leur long prolonge- 
ment antennaire, Masdevallia Veitchiana (fig. 153), caudaia; 
Shuttleworthir (fig. 176), Chimaera, etc. Nous savons même 
que la coalescence des sépales des Pleurothallidées peut être 
poussée si loin, qu'il en résulte des boutons ne s’ouvrant 
plus que par fentes latérales, comme chez les Crypiophoranthus, 
C. atropurpureus (fig. 35, K), C. Dayanus (fig. 178). Les sépales 
peuvent bien ajouter quelque peu à la zygomorphie de la fleur, 


— 166 — 


mais en général ils effacent plutôt l'apparence zygomorphe. 
Néanmoins, si on ouvre ces fleurs, on trouve toujours un pétale 
médian, réduit dans ses dimensions, mais très différencié dans sa 
LA forme. De même les 

D” ai pétales latéraux, bien 

que réduits à l’état 
de petites languettes, 
contrastent violem- 
ment avec les sépales 
latéraux; et par là, la 
différenciation du pé- 
rianthe, atténuée dans 
une certaine mesure, 
reste cependant très 
forte. Il en serait de 
même pour le périan- 
the de l’Ada auran- 
liaca. Au contraire, 
chez l’Zsochilus linearis 
(fig. 60, A, B), les trois 
sépales relevés don- 
nent à la fleur une 
symétrie rayonnante; 
mais l'examen des piè- 
ces internes, au lieu 
d'effacer cette première 
impression, l’accentue 
encore, car c'est à 
peine si le labelle dif- 
fère des pétales laté- 
raux par son onglet 
plié en double crochet 


(@). 


d) OVAIRE. — Dans 

Fig. 153. — Masdevallia Veitchiana Reus. les fleurs d'Orchidées 
monandres, nous savons que l’ovaire est infère. C’est un organe 
peu volumineux, le plus souvent grêle, régulièrement cylindrique 


_— 167 — 


dans toute'sa longueur, tèllement qu'on peut le prendre pour 
un pédoncule floral; d’où cette expression souvent employée : 
« les Orchidées ont un pédoncule creux. » Ces ovaires cylindri- 
ques sont extrêmement répandus chez les Orchidées acrotones. 
‘ Inversement, chez les Orchidées basitones, l’ovaire affecte 
plutôt une forme ovoïde, effilée vers son point d'attache. Le 
volume de cet ovoïde, et surtout sa forme, le différencient 
nettement d’un pédoncule floral ordinaire; on y reconnaît à 
distance un ovaire sessile; aussi voyons-nous que, dans ces 
plantes, l’ovaire intervient pour une certaine part dans la 
forme de la fleur, ce qui n’avait pas lieu pour les Orchidées à 
ovaire cylindrique. 

L’'ovaire est généralement tordu de 180° autour de son axe, de 
manière à amener le labelle en avant de la fleur; alors que dans 
le bouton, cette pièce est postérieure, c’est-à-dire entre le centre 
de la fleur et l’axe de l’inflorescence. Agçcidentellement, car le 
fait se montre isolément, et dans les séries les plus différentes, 
la torsion de l’ovaire redevient plus forte : elle atteint 5607; le 
labelle est alors ramené dans sa position initiale. Nous avons 
cité au passage, comme exemple de cette disposition, les 
Caleana major (fig. 98), Cryptostylis longifolia, Ponthieva maculata 
(fig. 136), Mystacidium distichum (fig. 20), Satyrium nepalense 
(fig. 180), les fleurs mâles (fig. 171) et les fleurs femelles du Cafase- 
tum tridentatum (fig. 172, B), mais non leurs fleurs myanthes (4). 

La section transversale de l'ovaire nous montre souvent 
un anneau épais contenant six faisceaux principaux : trois plus 
forts correspondent à de larges bourrelets placentaires bilobés; 
ils sont superposés aux pétales. Trois autres plus faibles cor- 
respondent aux plans médians des trois car- 
pelles qu’on admet dans la constitution de 
cet ovaire; ils sont superposés aux sépales. 

Les carpelles sont largement ouverts et 
‘coalescents par leurs bords. L’ovaire ést uni- NRA 
loculaire dans toute sa hauteur. Sa cavité est Jia fragrans Res. 
étroite et cannelée par les saillies qu'y projet- °°“Pe de l'ovaire. 
tent les placentas. Quand la surface externe de l'ovaire montre 
des cannelures, comme chez le Trichopilia(fig.154)et le Séanhopea, 
‘les cannelures déterminent six secteurs. Les plus grands et les 


— 168 — 


plus saillants correspondent aux régions placentaires. L’une 
d’entre elles, celle qui correspond au labelle, est même souvent 
plus grande que les autres. Extérieurement, la surface de l’ovaire 
est limitée par un épiderme bien différencié. L’assise épider- 
mique interne est formée d'éléments peu différenciés, bombés 
vers l’intérieur de la petite cavité ovarienne. 

L'apparition des ovules sur les placentas est très tardive. Les 
ovules excessivement nombreux ne sont indiqués au moment de 
la floraison que par une sorte de mamelon long et étroit, pluri- 
cellulaire. Il reste en cet état jusqu’à l’époque de la pollinisation, 
mais en vain y chercherait-on les divers organes de l’ovule 
adulte. Quand la pollinisation est faite, sous l’influence de l’exci- 
tation produite par les tubes polliniques descendant en gros 
paquets le long des placentas, le nucelle et les téguments ovu- 
laires se développent. Tout en restant toujours extrêmement 
petits, ils sont néanmoins très complets, dans toutes leurs 
parties. Ils sont finalement anatropes, bitégumentés. La produc- 
tion de l’épithelium femelle à l’intérieur du sac embryonnaire 
de ces ovules et la formation de la cellule femelle se font 
exactement comme chez les Liliacées, c’est-à-dire selon un plan 
qui est très uniforme pour toutes les Monocotylédones. 

Les principales variantes de la structure de cet ovaire portent 
sur les faisceaux. Au lieu d’un seul faisceau, on peut en trouver 
deux disposés sur un même rayon, l’interne étant plus petit que 
l’externe (Trichopilia), ou bien chaque faisceau est remplacé par 
un groupe plus ou moins considérable de faisceaux (Epidendrum). 
Chez l'Epidendrum ciliare, chaque faisceau dorsal est remplacé 
par quatre autres, dont trois sont rapprochés de la surface 
externe de l’ovaire; un autre beaucoup plus gros est beaucoup 
plus voisin de l’épiderme interne. Les faisceaux placentaires 
sont de même remplacés par une dizaine de faisceaux. 


€) GRADATION DES CARACTÈRES DE LA FLEUR CHEZ LES 
ORCHIDÉES MONANDRES. — Dans cette exposition des diverses 
parties de la fleur des Orchidées monandres et de leurs modifi- 
cations, nous nous sommes efforcés de mettre en relief, à mesure 
que nous les avons rencontrés, les caractères qui nous parais- 
sent le mieux indiquer la filiation des Orchidées, ceux-là par 


— 169 — 


conséquent qui peuvent avoir une certaine valeur taxinomique. 
Il convient maintenant d'apprécier la valeur relative de chacun 
de ces caractères, par suite, d’en déterminer la subordination. Il 
nous sera plus facile, cette étude faite, de nous rendre compte 
des progrès marqués par les diverses classifications proposées. 

Basitonie et acrotonie. — Le plus important de tous les carac- 
tères de la fleur des Orchidées monandres nous est fourni par la 
manière dont les pollinies entrent en rapport avec la masse 
adhésive. Selon que les caudicules se développent dans le haut ou 
le bas des pollinies, celles-ci s’attachant par le haut ou par le 
bas à la masse adhésive, nous sommes en présence d’Orchidées 
acroitones ou basitones, ces dernières étant supérieures aux pre- 
mières. 

Les trois types de gynostème.— L'anthère dressée sur le sommet 
apparent du gynostème marque une différenciation plus haute 
que l’anthère couchée, quand ce n’est pas seulement le simple 
fait d’un plus grand développement du rostellum qui provoque le 
redressement de l’anthère, comme chez les Telipogon. De là la 
gradation ascendante que nous avons indiquée : Orchidées à 
gynostème catileyien, — Orchidées à gynostème prérostylidien, — 
Orchidées à gynostème ophrydien. 

Pollinarium à styleis des gynostèmes cattleyiens. — Toutes choses 
égales, dans les gynostèmes cattleyien et ptérostylidien, les polli- 
narium à stylet indiquent des plantes plus élevées que les polli- 
narium sans stylet. 

Bursicules des Ophrydées. — Dans la série des Ophrydées, la 
différenciation des bursicules dans le rostellum est un caractère 
de supériorité. La réunion des bursicules en une seule, puis des 
masses adhésives en une seule masse, marque le plus haut degré 
de développement que les Ophrydées aient atteint (fig. 9). 

Le renversement de l'étamine en avant du gynostème, et le 
stigmate presque terminal, constituent non pas un progrès, mais 
une indication régressive pour les Satyriées. L'indépendance des 
lobes stigmatiques des Habénariées marque, toutes choses égales, 
une différenciation plus élevée. Mais le perfectionnement indi- 
qué par ces lobes stigmatiques indépendants est complètement 
subordonné à la différenciation des bursicules. 

Pied du gynostème. — Dans les gynostèmes cattleyien et ptéro- 


ss L/OR— 


stylidien, l’existence d'un pied marque une différenciation pro- 
fonde. Les Orchidées à prolongement pédial sont plus élevées; 
mais le caractère tiré de la présence du pied est subordonné au 
caractère qui définit les anthères acrotones et basitones. Le 
degré de développement du pied permet d'apprécier le degré 
d’élévation relatif des Orchidées d’une même série secondaire. 
Ainsi Aerides Vandarum (fig. 93), Chaenanthe Barkeri (fig. 134), 
Drymoda picta (fig. 10), dont le gynostème se prolonge par un 
très grand pied, sont, tous trois, des types très élevés. 

… Clinandrium. — Le très grand développement de la marge du 
clinandrium a souvent la valeur d’un caractère de tribu. Un 
stigmate basilaire indique un fait de régression, alors même que 
le sommet apparent de la colonne montre quelque nouveau 
caractère de différenciation, comme le rostellum à grand bec du 
Zygostates. Un bec au rostellum est l'indication d’une différencia- 
tion un peu plus accentuée dans une série très limitée. 

- L'absence de masse adhésive est un caractère régressif. L’indi- 
cation de la régression est encore beaucoup plus accusée lorsque 
le lobe rostellien du stigmate vient à disparaître, comme dans les 
Gymnadenia. 

A tous les degrés de différenciation de la fleur, on peut ren- 
contrer des faits de régression analogues; pour les apprécier 
exactement, il convient de déterminer : 1° le niveau atteint par 
l'accumulation des caractères différentiels progressifs, ce qui 
donne la série dont la plante fait partie; 2° la dégradation 
provoquée sur ce type, par l'accumulation des caractères 
régressifs qu'on y rencontre. C’est là un travail d'une délica- 
tesse extrême, exigeant de hautes qualités critiques chez le 
classificateur. 

La différenciation des pollinies a au moins la valeur d’un 
caractère de tribu. L'état pulvérulent des pollinies est un fait 
régressif. 

Les caractères fournis par le gynostème : anthères acrotones ou 
basitones, — pollinies à stylet, — bursicules, — prolongement 
pédial du gynostème, — et jusqu'à la différenciation des lobes 
stigmatiques, ont une plus haute valeur comme indication de la 
filiation que les caractères tirés du labelle et du reste du 
périanthe. 


Les stélidies. — Quelle est la valeur taxinomique des stélidies ? 
Jusqu'ici nous n'en savons rien (1). 

Les caractères fournis bar la différenciation du périanthe et par 
le labelle, n’ont qu’une valeur restreinte. Parfois on les voit néan- 
moins s'étendre à des séries ayant la valeur de tribus, comme les 
grands sépales des Pleurothallidées, comme le labelle articulé 
des Lycastinées; mais ceci n'indique que des tribus très 
homogènes. 

Ordinairement ces caractères tombent rapidement au niveau 
des caractères génériques et spécifiques. Une accumulation de 
ces petits caractères ne compense pas les indications tirées du 
gynostème. En d’autres termes, nous estimons que les variantes 
du gynostème sont meilleures indicatrices de la filiation des 
Orchidées, que les variantes les plus importantes tirées du 
périanthe. — Des caractères tirés du périanthe, l'articulation du 
labelle avec le gynostème semble être celui qui a la plus grande 
valeur. Il s’applique à plusieurs tribus. Le degré de différencia- 
tion du labelle vient ensuite, en particulier l'existence du plateau 
et la disposition de celui-ci. Il est très probable que c’est à une 
modification de cet ordre qu’il convient de rapporter les appen- 
dices supplémentaires postérieurs de la fleur des Zygostates 
cornuta (2) (fig. 78, 2). 

L'éperon basilaire prend souvent la valeur d’un caractère 
applicable à tous les genres d’un tribu très homogène. Quand 
l’éperon est axial, c’est-à-dire caché dans le haut de l’ovaire, ou 
quand le pied participe à sa formation, il a presque toujours cette 
valeur de caractère de tribu ou de sous-tribu. Le double éperon 
labellaire n'est qu’un caractère générique chez les Corysanthes et 
chez les Saiyrium. 

La différenciation des pièces du périanthe, donnant à chacune 


(1) Il semble qu’elles marquent une régression : c’est ce qui résulte immé- 
diatement de l'hypothèse sous-entendue par l’épithète de séaminodes, que nous 
leur donnons si souvent. D’autre part, surtout dans les types à gynostème très 
court, ces appendices jouent ou paraissent jouer un rôle particulier. Par là ces 
stélidies prendraient une importance plus considérable. Jusqu'ici, nous ne 
pouvons leur accorder plus de valeur qu’aux petites variations du labelle. 

(2) Le Zygostates devient ainsi la plus différenciée des Ornithocéphalées, 
petite série caractérisée par son rostellum à long bec. 


— 172 — 


une configuration différente selon sa place, indique des plantes 
très élevées dans une série très limitée qui ne dépasse pas la 
valeur d'une tribu. Hutlonaea, p. ex., est un genre très élevé 
dans les Gymnadéniées inférieures, mais il est moins différencié 
dans le sens ophrydien que les Chamaecorchis qui, tout en ayant 
un périanthe plus simple, ont une indication de bursicule, leur 
masse adhésive étant encore entourée d’une membrane. La 
formation d’un menton, par la concrescence des bords posté- 
rieurs des sépales latéraux, est de même un caractère qui ne 
s'applique en général qu’à une partie d’une tribu, à un genre 
ou à quelques genres tout au plus, tant que le gynostème n’inter- 
vient pas. La prédominance des sépales sur les pétales est 
devenu un caractère de tribu chez les Pleurothallidées; dans les 
autres tribus pluri-génériques, ce n’est le plus souvent qu’un 
caractère générique. 

L’écartement des deux verticilles du périanthe est un caractère 
propre au genre Ponthieva. Le déplacement du labelle et son 
retour près de l’axe de l’inflorescence ne peut servir qu’à définir 
quelques genres. 

La disparition de la zygomorphie du périanthe est un carac- 
tère régressif. 

Le mode de constitution du sympode et la préfoliation ne nous 
paraissent, malgré leur généralité, avoir que la valeur de carac- 
tères de tribus. Quant aux variantes tirées de la structure des 
feuilles et des tiges, ce ne sont jusqu'ici que des caractères géné- 
riques et spécifiques. Il se pourrait cependant qu’une étude plus 
approfondie de la tige, de ses faisceaux et de ses rapports avec 
la feuille, y montrât des caractères plus généraux applicables à 
tous les termes de la famille : c'est ainsi que la racine présente 
chez les Orchidées une structure singulièrement générale. 


IV. LES FORMES DES FLEURS CHEZ LES ORCHIDÉES. — Con- 
naissant maintenant les divers organes qui composent la fleur des 
Orchidées, nous allons esquisser rapidement les principales 
formes d'ensemble de l’appareil floral et caractériser chacune 
d’elles, autrement que par la perpétuelle répétition de ces mots: 


fleur étrange, admirable, à masque simien, papillonnante, etc. 
Ces épithètes, prodiguées à plaisir, rappellent les poètes déca- 


ES 
dents, à la recherche des mots frappant l'oreille du lecteur; 
mais elles ont le grand tort de ne pas nous faire connaître 
le fait même qu’elles ont la prétention d'exprimer. Trop souvent 
ces descriptions imagées, malgré toute leur poésie, nous mettent 
dans l'impossibilité d'apprécier l’intérêt d'une forme florale un 
peu spéciale pour la Morphologie générale des Orchidées (1). 

Nous connaissons déjà les principales formes florales dont 
nous allons parler; certaines d’entre elles présentent une géné- 
ralité se retrouvant dans des groupes plus ou moins nombreux, 
telles sont : 1° les fleurs à sabot, ou en forme de Cypripedium; 
2° les fleurs en casque ou à forme d’Orchis; 3° les fleurs en 
entonnoir ou à forme de Cattleya; 4° les fleurs ériopsides; 
5° les fleurs scaphyglottes; 6° les fleurs des Pleurothallidées ; 
7° les fleurs à grands sépales. A côté de ces formes généralisées, 
nous aurons à examiner quelques formes spéciales isolées, 
monogénériques ou paucigénériques. 

Si les fleurs à sabot et les fleurs en casque appartiennent 
presque exclusivement à des plantes voisines dans la classifica- 
tion, il n’en est pas de même des fleurs à forme de Cattleya. La 
fleur cattleyienne se retrouve dans plusieurs séries très diver- 
gentes d’Orchidées. Nous verrons, en effet, parfois entre deux 
fleurs cattleyiennes en apparence très semblables, certaines 
différences organiques dans les pièces employées, qui nous indi- 
quent très nettement qu’il s'agit de deux fleurs fondamentale- 
ment différentes, adaptées l'une et l’autre à un même insecte 
fécondateur, et présentant dès lors la même forme d'ensemble. 


(1) Nous nous bornerons à signaler la description faite par un amateur 
anglais du Megaclinium Bufo : « Que le lecteur se représente un serpent vert 
aplati comme une fleur séchée, puis une rangée de crapauds ou d’autres rep- 
tiles tachetés comme eux, attirés vers le centre en une seule file, le dos sou- 
levé, les pattes de devant s’écartant à droite et à gauche, la bouche large 
ouverte et une langue pourpre s’y mouvant convulsivement...»!!! Sans pousser 
aussi loin les comparaisons zoologiques, tout le monde a remarqué les formes 
très particulières qui ont mérité à certaines Orchidées leurs noms spécifiques ; 
elles évoquent l’idée tantôt d’une mouche (Ophrys muscifera), d'une abeille 
(Ophrys apifera), d’une araignée (Ophrys aranifera), d'une fourmi (Chiloglottis 
cornuta Hook.), d’un papillon (Oncidium Papilio, O. Krameri, Peristylis bifolia), 
d’une grenouille (Peristylis viridis), d’un singe (Orchis Macra), tantôt d'un 
masque de bouffon (Orchis Morio) ou même, pour les esprits macabres, du corps 
d’un pendu (Aceras anthropophora). 


— 19794 — 

I. Les fleurs à sabot ou à forme de Cypripedium (fig. 12, 13, 
66, 70, 71, 74, 170, 192, 205, etc.) appartiennent à toutes les 
Cypripédinées : elles répondent à cette adaptation spéciale qu'un 
insecte assez gros, comme une abeille, est astreint à passer 
dans un canal resserré où il frotte entre des étamines sessiles à 
pollen visqueux, et l'embouchure d'un labelle nectarifère. Le 
labelle y affecte cette forme en gobelet qui, vue de profil surtout, 
peut donner l’idée d’un sabot chinois ou d’une pantouffle à bout 
arrondi (fig. 72). Les bords de ce labelle rabattus ferment l’ouver- 
ture en laissant le gynostème à nu. Maïs, de celui-ci, on ne voit 
que le staminode cireux en forme d’immense stigmate. Cette 
grande pièce complète l’obstruction du labelle. Labelle et stami- 
node penchent vers le bas; ils sont fixés au centre d'une surface 
très faiblement concave, sur laquelle sont étalées, largement écar- 
tées les unes des autres, les cinq pièces du périanthe. Les sépales 
latéraux tendant à se réunir en une valve inférieure, les pétales 
latéraux sont un peu infléchis vers le bas. Les sépales sont des 
valves foliäcées, le sépale médian pouvant cependant devenir 
pétaloïde. La surface sur laquelle sont étalées les pièces du 
périanthe est presque verticale ou un peu oblique vers la face 
postérieure de la fleur. L’ovaire n'intervient pas dans cette forme 
de fleur ; il n’apparaît que comme un petit renflement côtelé du 
pédicelle. 

Ces fleurs à sabot ne se voient pas chez les Orchidées monan- 
dres ; elles n’y sont indiquées que par des labelles volumineux, à 
gobelet pointant isolément en avant des autres pièces de la fleur. 
La fleur de Calypso borealis (fig. 209), l'Orchidée par excellence 
des terres arctiques, est peut-être celle qui se rapproche le plus 
de la forme cypripédienne. Y aurait-il là un fait de mimétisme 
avec les Cypripedium des pays sibériens? — Bien qu'ayant un 
labelle à grand hypochilium en gobelet, la fleur du Vauda tricolor 
(fig. 127, A) s'éloigne déjà beaucoup des fleurs à forme de Cypri- 
pedium. Les pétales latéraux y sont rapprochés du sépale médian, 
formant un groupe antérieur opposé au groupe des trois pièces 
postérieures. La surface formée par les pièces du périanthe est 
convexe au lieu d’être concave; elle est inclinée à 45° environ 
sur l'horizon, mais en tournant sa face supérieure en haut. 

II. Les fleurs en casque ou à forme d'Orchis, sont extrêmement 


— 175 _— 

fréquentes dans les Orchidées basitones, qui forment manifeste= 
ment une série très différenciée dans un sens spécial. Dans la fleur 
à forme d’Orchis (fig. 5, A) l'ovaire intervient quelque peu; c'est 
un corps ovoiïde effilé vers le bas, renflé vers le haut, brusquement 
rétréci à l'insertion des sépales. Au-dessus de l'ovaire, on voit les 
trois sépales et les pétales latéraux rapprochés en un groupe qui 
pointe en haut et en avant de leur plan d'insertion. En opposition 
avec ce groupe de cinq pièces, pend un labelle en languette plus 
ou moins frangé, bifide ou trilobé à son extrémité. C’est sur ce 
labelle que vient se poser l’insecte visiteur à la recherche du 
nectar. 

Les petites variantes de cette forme de fleur portent : 

sur les dimensions du labelle : celui-ci peut être très long : 
Himantoglossum hircinum (fig. 5, D), ou au contraire très court et 


} 


Fig. 155.— A Cephalanthera grandiflora Bas; 8 Efipactis 
palustris Crrz.; ©c Limodorum abortivum Sw., fleur vue de 
face; D coupe longitudinale de cette fleur. 


alors restant contigu aux autres pièces : Cephalanthera grandiflora 
(g-155, 4); 

sur l’éperon labellaire qui devient d’une longueur excessive 
dans le Platanthera montana (fig. 128, A), ou quidisparaît presque 
complètement dans l’Himantoglossum (fig. 5, D), ou même com- 
plètement dans Listera ovata (fig. 42, B); 

sur la direction du casque par rapport à l’ovaire. Dans le 
Chamacorchis alpina (fig. 107, E), le casque se plie à angle 
droit sur l'ovaire. L'ovaire lui-même au lieu d’être dressé devient 
horizontal, soit tout entier comme dans le Meottia Nidus-avis 
(fig. 101, A), soit en courbant surtout sa partie supérieure, comme 
dans l’Epipactis palustris (fig. 155, B). 

Cette forme de fleur est plus profondément modifiée lorsque, 


— 176 — 


comme dans notre Platanthera montana (fig. 128, À), les deux 
sépales latéraux se détachent du groupe des cinq pièces et se 
rabattent en bas de chaque côté du labelle. Dans la fleur de 
l’Anæctochilus Reinwardtii (fig. 47, E), les sépales latéraux rabat- 


WI) HUE 
D) 


T 
| 


(NS 
nil 


Fig. 155bis. — Galeandra nivalis Horr. 


tus se rejettent ensuite brusquement vers la face antérieure de la 
fleur, alors que le labelle s’éloigne de l’autre côté. 

C’est près des fleurs en casque que viennent se placer les fleurs 
des Péerostylis de la section Antennæa (fig. 6, À, B); le sépale 
médian (sm) est devenu énorme; les sépales latéraux (s/) coudés, 


AS: QE 


filiformes, s'en écartent un peu comme deux antennes. Entre 
celles-ci, s'avance une languette velue (p#) qui n'est autre que la 
partie supérieure du labelle mobile, irritable, 

III. Les fleurs à forme de Caitleya sont caractérisées par leur 


Fig. 156. — Fleur, labelle et gynostème du Pleione humilis Don. 


labelle en entonnoir qui se porte en avant tout en s'infléchissant 
légèrement vers le bas. Un éperon nectarifère, placé tout en bas 
du labelle, provoquera la pénétra- 
tion des insectes visiteurs dans le 
couloir réservé entre le gynostème 
et le labelle. En se retirant, les 
insectes détermineront la mise en 
liberté des pollinies. Les autres 
pièces du périanthe, presque sem- 
blables entre elles comme forme 
et comme coloris, sont étalées 
dans un plan vertical ou très peu 
éloignées de ce plan, parce que 


leurs extrémités se réfléchissent en Fig.157.—Sobralia macranthaLor.; 
A fleur; B base des tiges. 


arrière, ou au contraire parce 

qu’elles sont légèrement concaves en avant. Toutes ces pièces 

sont de couleurs claires. L'ovaire n’intervient pas dans la forme 
12 


— 178 — 


de cette fleur, il prolonge le pédicelle floral sans modification 
aucune quand on arrive au niveau des loges ovariennes : Catitleya 
intermedia (Ag. 119), Cælogyne, Pleione humilis (fig. 156), Sobralia 
-macrantha (fig. 157, A) montrent ce type de fleurs dans toute sa 
pureté. L'entonnoir s'ouvre très sensiblement et laisse la colonne 
visible dans le Trichopilia suavis (fig. 158), dans ce curieux 
Laelia Digbyana (fig. 33, c), si remarquable par l’effilochement 


Fig. 158. — Tyichopilia suavis Loz., fleur et gynostème. 


du bord de son entonnoir qui rappelle, mais de loin, les lacs 
étranges des multiples filaments du labelle du Dendrobium Bryme- 
vianum (fig. 159). Chez le Cæœlogyne Cumingii (fig. 58, A), le 
tube de l’entonnoir se raccourcit tant soit peu, il s’ouvre en 
avant et laisse le dos du gynostème complètement à nu. 

La fleur de l’Epidendrum ciliare (fig. 81, A) se rapporte immé- 


« 


diatement aux fleurs à entonnoir, mais toutes les pièces du 


périanthe y prennent une gracilité extrême. Les cinq pièces 
étalées sont toutes très étroites. Le labelle est concrescent avec 


la colonne et la 
cache complète- 
ment. À sa par- 
tie supérieure, il 
se différencie en 
un long stylet 
médianfiliforme, 
et en deux pleu- 
ridies latérales 
(x) à bord déchi- 
quetés. 

Le Vanilla pla- 
nifolia (fig. 201) 
nous montre la 
modification de 
la fleur catt- 
leyienne par le 
rapprochement 
des cinq pièces 
du périanthe au- 


Fig. 150. — Dendrobium Brymerianum Roms. f,, fleur. 


tour du labelle. Le Thunia Marshalliana (fig. 28) nous présente 


Fig. 160. — Dendrobium fimbriatum Hook., fleur et rapports du gynostème et du 


labelle. 


quelque chose d’analogue sur des fleurs pendantes, dont le 
labélle est éperonné et dont les sépales latéraux s’insèrent 


— 180 — 


obliquement sur le haut de l'ovaire. Les Galeandra, G. Devoniana 
(fig. 118, A), G. nivalis (fig. 155°%), nous montrent, comme 


Fig. 161. — Cymbidium Lowianum Reus. f., fleur. 


modification, un entonnoir court très ouvert, enfermant incom- 


Fig. 162. — Chysis bractescens LoL.; 4 la plante; B coupe longitudinale de la 
fleur; c, D pollinarium. 


plètement la colonne, avec un fort éperon et les quatre pièces 


— 181 — 


latérales du périanthe rejetées en haut. Chez le Limatodes rosea 
(fig. 126), le cornet labellaire est bien rétréci, mais les autres 
pièces du périanthe sont réparties en deux groupes : un groupe 
supérieur opposé au labelle, et un groupe inférieur qui accom- 
pagne celui-ci; le labelle est encore éperonné chez le Limatodes. 

La fleur des Dendrobium (fig. 159 et 160) nous montre la 
forme en entonnoir modifiée par l'intervention du pied du 
gynostème, qui s’unit à la base des sépales latéraux pour pro- 
duire un fort menton. En même temps, les pétales latéraux sont 
un peu plus différenciés dans leur forme. Dans la fleur des 
Cymbidium : C. giganteum (Ag. 41, A), C. Lowianum (fig. 161), 
nous voyons le gynostème, légèrement prolongé en pied, se 
redresser en avant, comme s’il allait 
s'appliquer contre le sépale médian et 
en suivre la courbure concave. Le labelle 
se redresse de même contre le gynostème. 
Il en résulte une modification sensible 
dans la direction de l’entonnoir, qui diffé- 
rencie à première vue cette fleur. 

IV. Il convient, croyons-nous, d'établir 
une quatrième catégorie de fleurs pour 
les formes qui, comme l’Eriopsis rutido- 
bulbon (fig. 90, A, B), nous montrent un 
labelle très ouvert, pointant en avant et pi 163. — WWarrea LES 
en bas, courbé ordinairement en gout- lor Loc, fleurs. 
tière, mais laissant le gynostème complètement à découvert. 
Ce gynostème, fortement concave, tend à se rapprocher du 
sépale médian et à suivre sa courbure, comme nous le consta- 
tions dans les Cymbidium. Dans la fleur type d’Eriopsis, les 
autres pièces du périanthe sont largement et également écartées 
sur une surface concave, derrière laquelle est fixé l'ovaire, jouant 
le rôle de pédicelle creux. La différence principale entre la 
forme Eriopsis et la forme Cattleya est donc l'ouverture du 
labelle, qui laisse le gynostème libre; celui-ci a de plus une 
tendance prononcée à se montrer en haut parallèlement au 
sépale médian. Au fond, la différence entre ces deux formes est 
assez faible; aussi, entre les deux, constate-t-on de nombreux 
cas ambigus : les formes d’Eriopsis et de Cattleya ne répondant 


— 182 — 


A 


pas, comme les formes à sabot ou en casque, à tout l’ensemble 


Fig. 164. — Renanthera Lowit 


d’une série naturelle des Orchidées. 

Nous trouvons ces fleurs ériopsides 
chez un grand nombre d’Orchidées : 
les Odontoglossum : O. coronarium 
(fig. 236), le Spathogloitis aurea 
(fig. 216), le Chysis bractescens 
(fig. 162), le Cyriopodium Ander- 
soni (fig. 87, E), le Warrea tricolor 
(fig. 163). Cette forme de fleurs se 
produit tout naturellement lorsque le 
gynostème émet un fort prolongement 
pédial, comme dans le Paphinia 
cristata (fig. 144 et fig. 7, G). Dans le 
Gomeza planifolia (fig. 55, E), on voit 
les deux sépales latéraux se souder en 
une lame dont l’extrémité reste bifide. 

Une forme secondaire des fleurs 
ériopsides est celle que nous montre 
le Renanthera Lowii (fig. 164, A) 
dans ses deux formes de fleurs. Les 
cinq pièces étalées y sont triangu- 


Rens. f.; A fleurs: 8 gynostème laires, plus ou moins effilées. Le 


et labelle; c pollinarium. 


labelle est ou sensiblement plus petit 


que les autres pièces du périanthe, ou à peine différencié d’elles 


! ‘ Sas Dm 

Fig. 165. — Miltonia spec- 
tabilis Lor.; Afleur; 8 gy- 
nostème; c pollinarium. 


par sa forme; de sorte que sa présence 
ne frappe pas autant que dans les fleurs 
types. Ce labelle laisse d’ailleurs toujours 
la colonne complètement à découvert. A 
distance, la fleur ressemble à une étoile à 
cinq ou six branches semblables, étalées 
dans un plan. 

Chez le Miltonia spectabilis (fig. 165, À), 
une cause assez faible modifie sensible- 
ment l'aspect de cette fleur ériopside : la 
partie visible du labelle est une lame 
onguiculée. La fleur du Brassia brachiata 


(fig. 117, A), nous montre la modification des Renanthera com- 


in 
tandis que le sépale 


binée avec celle du Milionia ; de plus, 


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Fig. 166. — Oncidium Papilio Loi, fleur. 


— 184 — 


médian et les pétales latéraux forment un groupe supérieur, 
les sépales latéraux pendent en bas, à côté du labelle. La fleur 
du ZLeptotes bicolor (fig. 142, A) appartient au même type dérivé 
que celle du Byrassia, abstraction faite 
de son éperon axial postérieur et de 
son gynostème particulier. La fleur du 
Trichocentrum albopurpureum (Gg. 95, 
A, B) nous montre la fleur ériopside 
avec un labelle en languette pourvu 
d’un grand éperon; celles des Rodri- 
Es guezia decora (fig. 46, H) et R. ve- 
Fig. 167. — Oncidium Forbesii USta (ig. 170), nous la fait voir avec 

Hook., fleur. un labelle beaucoup plus grand que 
les autres pièces du périanthe, celles-ci étant toutes rapprochées 
du pétale médian. 

Le genre Oncidium réunit à lui seul toutes les modifications 
secondaires de la fleur ériop- 
side. Ce genre si nombreux 
nous apporte même quel- 
ques modifications nouvelles 
n'ayant absolument qu’une 
valeur spécifique; telles sont 
les fleurs des Oncidium Ca- 
vendishianum (fig. 46, A), O 
Papilio (fig. 166), O. Forbesii 
(fig. 167), O. varicosum (fig. 
251), O. Lanceanum (fig. 168). 
Citons encore les deux formes 
de fleurs de l’O. ornithoce- 
bhalum (fig. 169). Celles de 
l'O. Papilio sont remarqua- 
bles entre toutes par leurs 
Fig. 168. — Oncidium Lanceanum Lor., Pétales et leur sépale médian, 

fleur. linéaires dressés, ayant sou- 
vent plus de o"125 de longueur, et par leur large labelle jaune 
clair au centre bordé de rouge brun. 

La fleur du Pholidota articulata (fig. 149, B), appartient aussi 
à la forme ériopside dans ce qu'elle a de plus typique; elle tire 


— 185 — 


son caractère particulier du lobe terminal de son labelle, ayant 
la forme d’une double bourse très analogue à l'anthère d’un 
Arbutus ou d’un Vaccinium. Cette bourse, qui pend à l’extré- 
mité d’un fil tenu, est sans cesse en mouvement. Le Platyclinis 
glumacea (fig. 63), d’autre part, nous montre la 
forme ériopside avec un périanthe glumacéen, les 
cinq pièces étalées ayant la consistance de minces 
glumelles. 

Les fleurs des Catasétinées se rattachent aussi 
immédiatement au type ériopside : ceci est évident 
pour les fleurs mâles du Cycnoches ventricosum 
(fig. 151), et pour les fleurs myanthes des Catasetum 
(fig. 172, A), où la colonne se prolongeant supérieu- 
rement en bec, avance deux grandes antennes que pres 
l’insecte visiteur excitera en se déplaçant sur le  ornithoce- 
labelle. Dans la fleur monacanthe ou femelle des A rh 
Cataseium (fig. 172, B) et dans leur fleur mâle formes de 
(fig. 171), cette même forme est modifiée par le re 
renversement de la fleur, par le labelle en casque et par le 
rabattement des cinq pièces du périanthe en bas, ce qui laisse 


le gynostème complètement à nu. Chez les Mormodes la fleur 


Fig. 170. — Rodriguezia venusta Rcus. f., fleur vue de face et de profil. 


est plus profondément déformée. Il y a nécessité pour cette fleur 
de se jeter à droite ou à gauche de l’inflorescence, et en même 
temps de mettre à nu son gynostème. Les sépales latéraux sont 
alors rejetés en bas de la fleur. Le sépale médian et les pétales 
latéraux sont relevés en haut, mais rejetés sous le gynostème. 
Le gynostème est complètement à nu, longuement prolongé en 


pointe et tordu de manière à tourner sa face postérieure vers le 


— 186 — 


ciel. Le labelle très grand, charnu, est onguiculé : il a la forme 
d'une pyramide triangulaire, dont la base est en haut. L’arête 
la plus saillante de la pyramide est du côté du gynostème, et 
vientrecouvrir sa 
pointe. C’est en 
venant ronger les 
parties charnues 
de ce labelle, que 
les insectes visi- 
teurs toucheront 
l'articulation du 
filet staminal, et 


détermineront la 


Fig. 171. — Catasetum tridentatum Loi; à vue latérale projection des 
de la fleur mâle, les deux sépales inférieurs étant cou- ot 
pés; 8 le gynostème dressé; pd pédicelle de la pollinie; pollinies. 


an antennes. V. Lorsque le 
labelle, porté à l'extrémité d'un pied plus ou moins saillant, 
remonte le long de ce pied, se rapproche fortement du gynostème 
dont il suit la courbure, et tend à l'embrasser, si, en même temps, 
les cinq autres pièces du périanthe sont 
relevées autour de cette colonne, il en 
résulte une forme de fleur très fermée, 
comme celle du Scaphyglottis violacea 
(fig. 173, B). Nous pouvons considérer 
cette forme comme un nouveau type 
floral. Chez le Govenia liliacea (fig. 87, 
F, G) et le Batemania Colleyi (fig. 89, A), 
nous trouvons cette même forme, très 
légèrement modifiée par les sépales laté- 
raux (s/) qui pendent rabattus à l’extré- 
mité inférieure du pied. 
Dans les fleurs du Calanthidium la- 
EU CU ne 
thus: 8 forme monacanthus, Tieures sont un peu écartées de la 
colonne, par la grandeur du pied (f); 
de plus, les sépales latéraux portent chacun un grand éperon (sf) 
courbé en avant. La fleur du Phajus Blumei (fig. 85), appartient 
encore à cette même forme, mais les pièces tendent à s’écarter 


— 187 — 


beaucoup; ces dernières fleurs reviennent à l’aspect ériopside. 

Très tranchées dans leur physionomie, les fleurs scaphy- 
glottes sont donc très peu nombreuses, car elles se relient 
rapidement à la forme ériopside, qui 
est moins spécialisée. Ainsi le Pes- 
catorea Klabochorum (fig. 113, A, B 
et 175) montre un labelle parallèle 
au gynostème, et éloigné de celui-ci 
par un grand pied. Les cinq autres 
pièces du périanthe, relevées assez 
fortement, forment une cupule autour 
du gynostème et du labelle ; c’est à la 
fois une fleur ériopside qui se ferme, 
ou une fleur scaphyglotte qui s’ouvre. 
La fleur de l’Acineta Barkeri (fig. 146) 
fait naître les mêmes hésitations, le 
labelle étant écarté du gynostème, 
non plus par le prolongement pédial 
de celui-ci, mais par la courbure de 
son hypochilium (4). 

VI. La sixième forme de fleurs que 


PTE ae Fig. 173. — Scaphygloitis viola- 
nous avons à signaler mérite le nom ca Lor.; a port de la plante; 


de fleur pleurothallidienne : elle est tout nn re mois 
d'abord caractérisée par ses sépales, ‘ème: D pollinarium. 

qui deviennent prédominants; malheureusement cette prédomi- 
nance des sépales, qui est générale dans la tribu des Pleu- 
rothallidées, ne leur est pas exclusivement 
propre; de là vient l'impossibilité de rendre 
synonymes ces deux termes : fleurs pleuro- 
thallidiennes et fleurs à grands sépales. 

A l'inverse des fleurs à sabot et des fleurs 
en casque, qui ont un facies général bien net, 
la fleur pleurothallidienne nous présente une 
immense variété de formes. Sur ce thème: "7 
les sépales prédominants, la nature a accu- Fig. 174. — Calan- 

thidium  labrosum 
mulé les variations les plus dissemblables. (Roms. f.) Prrr. 
Prenons, par exemple, la fleur des Masdevallia : M. Estradae 


(g. 35, 4,1), M. caudata (fig. 176), M. Schlimii (fig. 176%); 


— 188 — 


la fleur montre trois grandes pièces ou valves brillamment colo- 
rées, étalées dans un plan vertical. Chacune de ces valves se 
prolonge en un long filament, rectiligne dans le M. Estradae, 
légèrement arqué dans le M. caudata, courbé en arrière dans 
le M. Schlimii. Ces trois sépales sont coalescents dans leur 
partie inférieure, où ils forment un petit tube conique. Dans ce 
tube sont cachés deux petits pétales latéraux charnus, un tout 
petit labelle et un gynostème d'acrotone. Les pièces internes 


Fig. 175. — Pescatorea Klabochorum Rcus. f., fleur, gynostème et labelle, 


du périanthe n’atteignent pas l'embouchure du tube. Elles ne 
participent donc pas à la forme de la fleur (1). 

Dans le Restrepia antennifera (fig. 177), la fleur plus ouverte 
laisse voir les pièces internes. Le sépale médian se prolonge seul 
en pointe; il est complètement libre et forme une valve supé- 
rieure. Les sépales latéraux, concrescents par leur bord postérieur, 
forment une valve inférieure à pointe bifide. Les pétales latéraux 
en languette se prolongent par une antenne. A la place de la fleur 
trivalve des Masdevallia, nous avons une sorte de fleur trimère. 
Chez les Octomeria (fig. 35, D), les sépales latéraux sont moins 


(1) La fleur de certains Masdevallia : M.Chimaera,M.Backhouseana, M. Wal- 
lisii, est toute couverte d’une pubescence hérissée. 


an — 


grands; les pétales latéraux sont semblables aux sépales; ils 
interviennent dans la partie visible du périanthe, qui montre une 
cupule à cinq valves et un petit labelle très écarté du gynostème; 
c’est-à-dire qu'on arrive à une fleur ériopside minuscule. 

La fleur des Stelis (fig. 35, B) réalise, avec de grands sépales 
étalés dans un plan, une fleur très ouverte trimère, avec sépale 


Fig. 176. — Masdevallia caudata, var. Shuttleworthii Ress. f., fleur. 
médian inférieur plus grand. La fleur du Scaphosepalum verruco- 
sum (fig. 35, L) est une sorte de grelot trivalve, à sépale médian 
plus petit, inférieur. Chez le Physosiphon Loddigesii (fig. 35, M), 
les trois sépales, longuement coalescents, forment un tube renflé 
à la base, rétréci un peu en dessous des dents et à bord trivalve. 
A première vue, on se croirait en présence, non d'une Orchidée, 
mais d'une Jacinthe. Dans les Cryptophoranthus, C. atroburbureus 


(fig. 35, K), ou C. Dayanus Rolfe (fig. 178), la concrescence des 
sépales est poussée très loin; ces pièces demeurent unies 
jusqu’en haut. Le bouton à facies aristolochéen qui en résulté 
s'ouvre latéralement paf 
des fentes. 

À chaque genre de 
Pleurothallidées corres- 
pond donc, comme nous 
le disions en commen- 
çant, une variante de ce 
thème constant : fleurs à 
sépales dominants; et ces 
variantes, pour si nom- 
breuses qu’elles soient, 
sont remarquablement 
tranchées. 

VII. En dehors des 
Pleurothallidées, les 
fleurs à sépales domi- 
nants se présentent iso- 
lément. Les Disa, et en 
particulier le Disa me- 
gaceras (fig. 121,D),nous 
ont montré une fleur à 
trois grands sépales, les 
deux inférieurs rabattus 
découvrant les pétales, 


le médian supérieur en 
capuchon se prolongeant 
par un long éperon; d’où 
pour la fleur, une res- 
semblance avec une fleur 
d’Aconit. Le Bulbophyl- 


lum Careyanum (fig. 52, 
Fig. 176bis, — Masdevallia Schlimii Lin. pp, c) a une fleur remar- 


quable par ses deux grands sépales inférieurs, qui cachent toute 
la fleur à l'exception du sépale médian. Celui-ci forme comme une 
petite valve. C’est à l’intérieur de la petite fenêtre ainsi réservée; 


qu’on voit s’agiter son labelle charnu. La fleur du Megaclinium 
maximum (fig. 62, B), quoique assez différenciée comme forme de 
celle des Bulbophyllum, est cependant construite sur le même 
type : la fleur est plus ouverte; le sépale médian se relève forte- 
ment en arrière, découvrant l'intérieur de la fleur; les sépales 
latéraux (s/) sont connés en une mentonnière, qui porte sur son 
bord un labelle très mobile Em). Ces sépales latéraux sont ir 
longés en un stylet 
plein. Chez le Cir- 
rhopetalumCumingii 
(fig. 52, F), les deux 
sépales latéraux très 
grands, membra- 
neux, cachent les 
pièces internes, qui 
ne sont visibles que 
par une petite fenê- 
tre antérieure; une 
petite valve peut re- 
couvrir exactement 
celle-ci, ce n'est 
autre chose que le 
sépale médian. Dans 
cette série des Bul- 
bophyllinées, il y 
aurait encore à citer 
les dispositifs des 
Bulbophyllaria, du 
Tone paleacea (fig.62, 

, de l’Achrochæne 
punciala. Pour ne Fig. 177. — Restrepia antennifera H. et Krz. 


pas allonger indéfiniment cette série d'exemples, nous ne nous 
arrêterons plus que sur le Drymoda picta (fig. 10), dont nous 
avons déjà parlé. Là encore nous avons trois sépales beaucoup 
plus grands que les pièces internes. De même que dans les autres 
Bulbophyllinées, le sépale médian (sm) est moindre que les 
sépales latéraux (s/). Ceux-ci sont insérés, par une base étroite, à 
l’extrémité d’un très long pied (f); ils sont très écartés et laissent 


nr 0 


à découvert un petit labelle trilobé (pm) avec plateau charnu. Les 
pétales latéraux (pl) sont fort petits, moindres que les expansions 
latérales du gynostème. Les caractères essentiels de la Bulbo- 
phyllinée sont donc conservés, mais de nouvelles différenciations 
s’y sont ajoutées. Le Drymoda est supérieur aux autres termes 
de sa série (1). | 

Dans le Schlimia trifida (fig. 179), nous nous trouvons encore 
devant une forme à sépales dominants, maïs l’allure de la fleur 
est tout autre. Nous avons signalé le casque formé par la con- 
crescence de ses sépales latéraux. La visière inférieure — qui 
est le sépale médian — 
laisse à découvert les 
pièces internes et Ja 
colonne. Les genres 
voisins de Schlimia, 
Stanhopea, Coryanthes, 
Gongora, présentent 
encore de très grands 
sépales, mais ce ne sont 
plus eux seulement qui 
donnent à la fleur sa 
physionomie étrange; 
les pièces internes, en 


Fig. 178. — Cryptophoranthus Dayanus RoOLFE, particulier le labelle, et 


groupe de trois fleurs. le gynostème lui-même 


interviennent très efficacement dans la forme des fleurs; d'autant 
plus qu'il s’agit, chez presque tous, de fleurs très ouvertes, à 
pièces très écartées les unes des autres. 

Le Coryanthes maculata (fig. 82, A) nous présente d'un côté de 
sa fleur deux immenses sépales latéraux (s/),auxquels fait pendant 
un labelle extrêmement différencié (pm) avec onglet, hypochilium 
en dé à coudre (k), grand mésochilium et épichilium. Les pétales 
latéraux sont deux languettes verticales entre lesquelles paraît le 
gynostème courbé (2). 


(1) Le Monomeria présente les mêmes caractères que le Drymoda. 
(2) Le labelle du Coryanthes Albertinae si bizarre, si difficile à décrire, dit le 
Comte du Buysson, forme d’abord une espèce de bonnet charnu, soudé aux 


PL. XIII. 


CATASETUM FIMBRIATUM LINDEL.L FISSUM RCHB.F 


CT NTA 
bre ; l'ai 


nn — 

Le Stanhopea Wardii (fig. 130), a de même ses deux sépales 
latéraux, très grands, rejetés au-dessus de l'insertion du pé- 
rianthe; de plus, son labelle est très différencié. Ses pétales 
latéraux et son gynostème sont plus grands encore et plus 
apparents que ceux des Coryanthes. A part la forme triangu- 
laire des sépales latéraux, complètement insérés sur le pied 
du gynostème, et un labelle en forme de pelle, la fleur de 
Gongora tricolor (fig. 92) appartient au même type que celle des 
Stanhopea. 

Une dernière forme de fleurs tire son caractère de ses grands 
sépales; nous l’avons déjà signalée : c’est celle de l’Zsochilus 


Fig. 179. — Racème de fleurs du Schlimsia trifida PLANCH. 
linearis et de l'Ada aurantiaca. Assez petites, les fleurs de ces 
plantes peuvent être confondues avec des modifications de fleurs 
en casque. Chez l’Isochilus linearis (fig. 60), les trois sépales 
relevés se touchent bord à bord, comme dans un calice trivalve. 
Ils cachent les pièces internes du périanthe. Dans l’Ada (fig. 139), 


-pièces du périgone par un onglet cylindrique et charnu, le tout d’un blanc ver- 


dâtre, d’une consistance de cire, ponctué de points pourpre carminé. Du centre 
de ce capuchon, part un lobe énorme, affectant un peu la forme d’un sabot de 
Cypripède, longuement atténué en gouttière à la base, puis dilaté en trois lobes, 
venant envelopper le gynostème, d'un pourpre carminé éclatant et luisant à 
l'extérieur où il est encore relevé de côtes saiïllantes. 


13 


ut — 
la fleur est pendante au lieu d’être dressée, et ses sépales sont 
un peu moins fortement serrés. 

VIII. Passons maintenant rapidement en revue ce que nous 
avons appelé les fleurs à formes spéciales, parce qu’elles n’appar- 
tiennent qu’à un genre. Nous avons déjà eu l’occasion de les 
citer, pour la plupart, en étudiant les dispositifs qui contribuent 
soit à atténuer la différenciation du périanthe, soit au contraire à 
l’accentuer. Quelques mots suffiront pour caractériser la plupart 
d’entre elles. | 

Pour atténuer la différenciation du périanthe, nous avons vu 
que les trois sépales et les deux pétales latéraux devenaient 
semblables, en même temps que la forme du labelle plus simple 
tendait à se rapprocher de la forme des autres pièces. Le Notylia 
bipartita (fig. 83, A), nous montre une fleur ériopside, très 
ouverte par conséquent, où le labelle est une large lancette 
différant assez peu des autres pétales. Dans le Corymbis veratri- 
folia (fig. 138, A), le labelle n'est caractérisé que par sa taille 
un peu plus grande et par sa position. Les pièces du périanthe 
de Corymbis sont resserrées à leur base contre le gynostème. Nous 
avons déjà eu l’occasion de citer et de décrire complètement les 
fleurs ouvertes du Thelymitra ixioides (fig. 99, A) et du Telipogon 
(fig. 96):1e Thelymitra avecses six pièces périanthaires semblables 
étalés dans un plan; le Telipogon avec ses sépales verts formant 
calice et ses trois pétales formant corolle. A ce moment, la fleur 
d’Orchidée paraît, au gynostème près et en négligeant l’infèro- 
varie, une fleur de Tradescantia. 

Beaucoup de fleurs spéciales ne doivent leur physionomie 
particulière qu’à une exagération dans un changement de direc- 
tion des pièces du périanthe ou, ce qui était facile à prévoir, à la 
forme toute particulière de leur labelle. L'’Oberonia iridifolia 
(fig. 23, B), par exemple, est caractérisé, entre toutes les Orchi- 
dées, par son labelle en gouttière dressé en l’air, alors que les 
cinq autres pièces du périanthe sont rabattues en bas sur 
l'ovaire. Le Satyrium nepalense (fig. 180, A), avec une disposi- 
tion des pièces analogue à celle de l’Oberonia, est caractérisé 
par son labelle en spathe, dont nous avons cité le double éperon. 
La fleur du Cestichis pendula (fig. 50, D), qui a de même son 
gynostème et son labelle dressés, alors que les autres pièces du 


hr — 
périanthe sont rabattues sur l'ovaire, est caractérisée par l'écar- 
tement du gynostème et du labelle, et par son labelle qui de profil 
ressemble à une cornue. Dans cette même série des Liparidinées, 
à laquelle nous avons emprunté les exemples de l’Oberonia et du 
Cestichis, nous verrions encore des fleurs de formes très singu- 
lières; comme le Malaxis paludosa (fig. 221) et le Microstylis 
versicolor, caractérisés par la forme de leur labelle et la direction 
des autres pièces du périanthe. La petite fleur du WMicrostylis 
versicolor (fig. 50, B), frappe par 
son labelle en forme de plateau à 
bord frangé, placé à la partie supé- 
rieure de la fleur. 

On comprend que les modifica- 
tions de cet ordre se manifestent 
surtout dans la forme si générale 
des fleurs ériopsides. Le Caleana 
major (fig. 98), cité si souvent, a 
ses pétales latéraux semblables aux 
sépales ou à peine différenciés ; les 
uns et les autres sont des languettes 
étroites, étalées sur une surface Jin ARE rie es 
faiblement concave, derrière Ia- longitudinale; c coupe longitudi- 

, : : nale du gynostème; D» double épe- 
quelle l'ovaire vient s'attacher. ;6n du labelle en spathe vu de dos: 
Le gynostème parallèle au sépale F8ÿn0stème. 
médian (sm) est presque collé contre lui, largement écarté du 
labelle; celui-ci (pm) est rabattu en face de lui, de l’autre côté de 
la fleur. Ce sont les caractères de la fleur ériopside; mais ici les 
sépales latéraux, serrés contre le labelle, forment un groupe 
supérieur opposé à l'ensemble du sépale médian et des sépales 
latéraux. Le gynostème très large, pétaloïde, intervient dans la 
forme florale, qui est caractérisée entre toutes par son labelle en 
champignon. La fleur d’Aerides Vandarum (fig. 93), si élégante 
dans sa forme, si particulière dans sa physionomie, dérive immé- 
diatement aussi des fleurs ériopsides. Le pied du gynostème (/) 
est devenu très long; le labelle (pm), élégamment découpé avec 
pleuridies hypochiliennes(x), est éperonné. Les sépales latéraux (sl) 
sont insérés sur le pied, près du labelle; les pétales latéraux 
eux-mêmes (p/) descendent s’insérer sur le pied. Chacune de ces 


ho — 


variantes est bien faible; nous en avons rencontrées de semblables 
dans les dérivés immédiats de la fleur ériopside type, et cependant 
à quel résultat aboutit, dans l’Aerides, leur accumulation ! 

La fleur du Thecostele Zollingeri (fig. 84, À) est plutôt catt- 
leyienne qu’ériopside. La base de son gynostème est, en effet, 
étroitement embrassée par l’hypochilium labellaire; la colonne 
ne devient libre qu’au-dessus de son genou; alors elle se 
rapproche du sépale médian et se courbe en avant; par là, 
comme par la partie supérieure de son labelle étalé en languette, 
cette fleur présente quelque ressemblance avec les fleurs ériop- 
sides. Les trois sépales sont relativement grands, beaucoup plus 
grands que les pétales latéraux. Ces derniers sont relevés en 
haut contre le sépale médian, formant un groupe supérieur 
opposé aux sépales latéraux. 

Chez le Sfanhopeastrum ecornutum (fig. 125), nous trouvons 
aussi un labelle plus rapproché du gynostème, mais qui ne par- 
vient pas à l'entourer. Ce labelle paraît réduit à sa portion hypo- 
chilienne. Il est court, épais, charnu comme le gynostème. En 
opposition avec le labelle horizontal, on voit un groupe supé- 
rieur formé par les trois sépales. Les deux sépales latéraux sont 
relevés contre le sépale médian. Les pétales latéraux, semblables 
aux sépales, tendent à se relever vers ceux-ci, mais sans y 
parvenir complètement. 

Les formes florales qu’il nous reste à examiner sont celles où 
la différenciation florale est accentuée, soit par l’adjonction de 
pièces nouvelles, soit par une différenciation particulièrement 
profonde des pièces du périanthe. 

Le Zygostates cornuta (fig. 78, A), nous présente une fleur 
très ouverte, avec pétales différenciés par rapport aux sépales. 
Les pétales latéraux sont onguiculés et à bord denté; le labelle, 
en forme de valve ou de bateau; les sépales latéraux, plus grands 
que le médian. Trois languettes (x, x, z) placées dans la partie 
inférieure de la fleur, entre le labelle, les sépales latéraux et le 
gynostème, réalisent un type floral, très différent de celui des 
autres Orchidées, d'une physionomie spéciale que le bec rostellien 


accentue encore. 
Nous avons insisté sur les Chæœnanthe et les Diadenium, les 


Plectrophora et les Comparettia. Dans ces fleurs (lg. 134, A, 77, A), 


ir — 
la pièce formée par la coalescence des sépales latéraux entre eux 
et avec le pied du gynostème, se creuse en poche et prend 
l’aspect d’un chaperon; le labelle et les pétales latéraux s'insè- 
rent au fond de cette poche. Le Compareitia macroplectron 
(fig. 77) montre en plus un labelle (B) très différencié dans sa 
forme. Les fleurs hermaphrodites ou fleurs myanthes des Cata- 
setum (fig. 172, A) ont une certaine ressemblance avec celles-ci. 

L’Acanthephippium javanicum (fig. 116, A) réalise une fleur 
d’Orchidée à facies d’Acanthe. Les sépales latéraux, semblables 
à deux grandes valves, sont relevés en haut, concrescents à leur 
base. Ils demeurent adhérents sur le reste de leurs bords posté- 
rieurs, à l'exception d’une boutonnière par laquelle passe l'éperon 
pédial; le sépale médian est relevé également. Il en résulte un 
vase ou une coupe aplatie latéralement, légèrement étranglée un 
peu au-dessous de son bord supérieur. L’extrémité des pétales et 
du long gynostème apparaît par l'ouverture du vase. 

La fleur du Corysanthes picta (fig. 31) offre l'assemblage d'un 
labelle cattleyien enveloppant le gynostème, et de pièces latérales 
filiformes d’abord inclinées du côté du labelle et dont les extré- 
mités supérieures divergent en tous sens. Un sépale médian (sm), 
courbé en languette très concave, suit la face dorsale du gynos- 
tème et l’abrite complètement. 

La fleur de l’Elleanthus Caravata (fig. 59, A, B) a encore un 
labelle en entonnoir, qui n’est pas sans analogie avec les labelles 
cattleyiens. L'entonnoir est de beaucoup la pièce la plus grande 
de la fleur. Il est fortement redressé en haut; son embouchure, 
très évasée, a le bord cilié. Sa base présente une bosse ou un 
gros éperon. Les sépales et les pétales latéraux sont redressés 
contre l’entonnoir, sur les faces latérales et à sa face postérieure. 
Dans l'inflorescence spiciforme de l’Elleanthus, les entonnoirs 
sont seuls visibles ; tout le reste est caché par les labelles et par 
de grandes bractées ciliées. 

Dans la fleur de l’Huttonaea pulchra(fig.122),nousavons signalé 
la différenciation toute particulière de chacune des pièces du 
périanthe : le sépale médian plus petit, en forme de lancette 
dressée en haut; les sépales latéraux larges, rejetés en arrière; 
les pétales latéraux longuement onguiculés, à bords frangés, 
avec une grande dépression au milieu de leur lame; leur 


— 198 — 


labelle onguiculé, frangé, et leur gynostème à anthère fortement 
élargi à sa base. Cette forme de fleur est absolument isolée; c’est 
une de celles où la différenciation des parties est poussée le plus 
loin. | 

La fleur du Diuris elongata (fig. 100, A) nous a de même montré 
un périanthe dont toutes les pièces sont différenciées, chacune 


Fig. 181. — Anguloa Clowesii Lor., à droite, la fleur vue de profil: à gauche, la 
fleur ouverte pour montrer le labelle et le gynostème. 


dans un sens spécial : un sépale médian supérieur embrassant, 
des sépales latéraux filiformes descendants, un labelle membra- 
neux en languette lancéolée, enfin deux pétales latéraux insérés 
sur les bords du sépale médian. 


L'une des plus curieuses modifications, à tous les points de 


nn — 
vue, nous est fournie par la fleur des Anguloa (fig. 181), dont les 
sépales et les pétales charnus sont connivents, les sépales recou- 
vrant les pétales de manière à former un globe fermé, dans lequel se 
trouvent renfermés le labelle et la colonne. La coupe de la fleur de 
l’Anguloa Clowesii(fig. 181)permet au lecteur de se rendre compte 
de la forme de cette curieuse fleur, aussi différente à première vue 
des Cattleya et des Laelia que la tulipe diffère de la Rose. 

Comme dernier exemple de forme de fleur, nous citerons la 
plus étrange de toutes les Orchidées, le Ponthieva maculaia 
(fig. 136, A, 8). Cette fleur nous montre trois sépales dominants, 
ciliés sur leur face externe, ponctués sur leur face interne; ces 
sépales sont très écartés, le médian étant inférieur par rapport 
aux deux autres. Entre les sépales, s'élève une colonne qu'à 
première vue on identifierait au gynostème, mais nous voyons 
qu’elle porte les pétales. Ceux-ci sont réduits comme dans une 
Pleurothallidée. Le labelle (fm) est une petite pièce pentagonale, 
largement appliquée sur la colonne : il est creux. Les pétales 
latéraux (pl), diamétralement opposés au labelle, sont asymétri- 
ques, membraneux, pédicellés. Le gynostème est excessivement 
court : qu'on imagine une petite caisse rectangulaire, dont le cou- 
vercle supérieur présenterait deux trous communiquant l’un avec 
l’autre; le trou supérieur rond correspond au stigmate; le trou 
inférieur triangulaire porte, attachée sur sa base, une anthère (a) qui 
se couche dans ce trou. La pointe de l’anthère s'avance presque 
au-dessus du stigmate. C’est encore l’Orchidée monandre, dans 
sa forme acrotone, mais avec un périanthe qui a pris des carac- 
tères tout spéciaux. 

L’asymétrie résultant d'un développement inégal des parties 
symétriques de la fleur n’a pas produit chez les Orchidées de 
formes très différenciées. Les plus remarquables sont les fleurs 
d'Haemaria (fig. 102) et de Macodes (fig. 47, D), qui diffèrent 
certainement moins des fleurs ordinaires des Orchidées que la 
fleur du Ponthieva maculata. 


V. POLLINISATION DES ORCHIDÉES. — La pollinisation des 
Orchidées, c’est-à-dire le transport du pollen de l’anthère 
jusqu’au stigmate, a fourni au grand naturaliste anglais Charles 
Darwin le sujet d’un de ses plus beaux ouvrages : Fertilisation of 


> 00) 


Orchids, 1862. Tout est à lire et à méditer dans ce beau livre; 
on ne sait ce qu’il y faut le plus admirer, de la clarté de l’exposi- 
tion, de l'habileté de l’observateur, ou de la merveilleuse adapta- 
tion de chacun des types qu'il nous fait connaître. Longtemps 
avant Darwin, les botanistes avaient déjà reconnu le rôle des 
insectes dans le transport du pollen chez les Orchidées : « Les 
insectes viennent soulever les brillants rideaux du lit nuptial de 
ces filles du Soleil, » s’écrie dans une inspiration imagée le 
vieux L. C. Richard. Mais aucun d’eux n'avait apporté dans 
cette étude le soin et l’expérimentation qui ont attaché à tout 
jamais le nom de l’illustre auteur de « l’Origine des espèces » à 
la Fécondation des Orchidées. 

La fécondation croisée est la règle chez les Orchidées. — D'une 
manière générale, malgré l'hermaphroditisme de Ia fleur des 
Orchidées, toutes les dispositions particulières que nous y ren- 
controns n’ont d’autre but que d’assurer la fécondation croisée. 
Le pollen de la fleur ne peut arriver sur son propre stigmate:; il 
est porté sur le stigmate d'une autre fleur. Cette disposition est 
poussée parfois si loin, que la fleur devient unisexuée par avor- 
tement. 

Bien que la pollinisation croisée soit le cas de beaucoup le plus 
fréquent, on trouve néanmoins de loin en loin des cas de fécon- 
dation directe(1), et même des exemples de fleurs constamment 
fermées, toujours fertiles, dans lesquelles la pénétration d’un 
pollen étranger semble tout à fait impossible. 

La pollinisation des Cypripedium. — Dans les fleurs à sabot, 
c’est-à-dire dans les Cypripedium qui sont les moins différenciées 
des Orchidées comme appareil mâle et comme stigmate, le 
labelle, couvert de poils nectarifères sur sa face interne, a son 
embouchure fermée par ses bords repliés, qui agissent comme une 
trappe à blattes. L'ouverture basilaire du labelle est partiellement 
obstruée par le stigmate et par la masse du gynostème. Le grand 
staminode cache en avant l’entrée de cette ouverture, qui ne 


(1) Darwin cite dix espèces; Forbes, Fitzgerald, Cheeseman en ont relevé 
d’autres et, comme le fait remarquer Ridley, si on connaissait d’une manière 
plus complète les Orchidées des tropiques à fleurs petites, sombres, verdâtres, 
on y trouverait encore de nouveaux exemples de fécondation directe. 


= Li — 


demeure accessible que par deux couloirs latéraux venant débou- 
cher à gauche et à droite de la base du gynostème, et directement 
en dessus. Qu'une petite abeïlle, comme l'Andrena parvula, soit 
introduite dans la cavité du labelle, ses bords renversés lui 
opposent un invincible obstacle : elle ne peut sortir par la fente 
supérieure de ce labelle. Après quelques efforts, l’insecte 
s'échappe par l’un des couloirs latéraux de la base du gynostème, 
mais il n’a pu franchir ce passage sans frotter la surface d’une 
anthère largement ouverte et, quand il sort, son corps est tout 
couvert d’un pollen visqueux. Placé dans une autre fleur, l’insecte 
s'échappera de même; mais si on examine le stigmate de cette 
seconde fleur, on remarque qu'il est tout couvert de pollen 
demeuré adhérent à sa surface. L'extrême viscosité du pollen 
supplée ici à l’absence de viscosité du stigmate. Si, au lieu de 
faire ainsi pénétrer l’insecte directement dans la cavité du labelle 
par sa fente antérieure, on essaie de faire pénétrer dans cette 
cavité un corps tenu, flexible, tel une soie, un poil, et si on le 
pousse plus avant, le pollen est amené sur le stigmate. L’insecte 
suceur, le papillon, par exemple, peut donc, en enfonçant sa 
trompe dans les couloirs latéraux, porter le pollen de la fleur 
jusque sur son stigmate; mais il le transportera tout aussi faci- 
lement sur une autre fleur. 

Chez les Cypripédinées, la fécondation croisée est fréquente. 
Opérée artificiellement, elle a doté nos serres d'innombrables 
variétés : citons, parmi les plus belles, le Paphiohedium Leeanum 
(fig. 182) obtenu par l’éminent orchidophile anglais Sir Trevor 
Lawrence, en mariant le Paphiopedium Spicerianum avec le 
P. insigne. Dans ces hybridations, se produisent de curieux phé- 
nomènes dont beaucoup sont encore inexpliqués. Ainsi on voit 
tantôt les mêmes parents produire des hybrides différents 
d'aspect; ailleurs les hybrides fécondés donnent des variétés fort 
peu distinctes des parents. Que le stigmate du P. insigne reçoive 
du pollen de P. Fairieanum, les graines donneront le P. Arthu- 
rianum. Si on féconde de même le stigmate du P. insigne Chan- 
tint, l’hybride obtenu, le P. X Arthurianum pulchellum présente 
les caractères principaux de la plante-mère : son sépale dorsal 
plus large et ses macules plus fortes. 

La fécondation de la fleur des Cypripédinées par son propre 


AO 


pollen est possible : le Paphiopedium Schlimii est toutefois le 
seul Cypripède actuellement connu qui se féconde par son 
propre pollen, sans intervention étrangère. 

La pollinisation des Cattleya. — Dans une fleur de Cattleya 
parvenue à l’époque de la pollinisation (fig. 75), le rostellum (7), 
très saillant au-dessus du stigmate (s), montre une face infé- 


Fig. 182. — Paphiopedium X Leeanum (VEITcH). 


rieure visqueuse; c'est la masse adhésive exposée à nu. Sur la 
face supérieure du rostellum qui est sèche, reposent les caudi- 
cules (1) des pollinies déjà libérées (D), car l'anthère est ouverte. 


——————————…—…—…—…—…—"—"…—…—…—…—…"—" "—…"…"—"— —"—"————— 


(x) Ces caudicules sont remarquables parce qu’elles sont couvertes de 
tétrades polliniques reliées à la caudicule par un filament élastique. 


L’anthère (c) reste couchée sur ces pollinies, maintenue en 
place par le petit filet staminal élastique formant ressort (6). 
En cet état, il est de toute impossibilité à la pollinie d’atteindre 
le stigmate : le vent ne saurait la mettre en liberté; mais qu’un 
insecte pénètre jusqu’au fond du labelle, attiré par le nectar 
sécrété dans l’éperon axial, et qu'il se retire sa récolte faite, il 
frôle la saillie du rostellum et entraîne en sortant la masse adhé- 
sive. Il rencontre alors nécessairement les caudicules, qui font 
saillie au bord du rostellum relevé. Les caudicules sont immé- 
diatement fixées à la masse adhésive et enlevées avec elle. Que 
l’insecte se rende alors vers une autre fleur plus avancée, 
l'embouchure de celle-ci est plus ouverte. En pénétrant dans 
l'entonnoir, l’animal frottera le stigmate et y abandonnera les 
pollinies dont il était chargé. La fécondation est donc croisée : la 
fécondation directe de la fleur par son pollen est impossible. 
Nous retrouvons cette manière d'être si curieuse chez les Laelia, 
les Phajus, les Cœlogyne, etc., etc. 

Dans certains Dendrobium : D. chrysanthum par ex., les polli- 
nies, unies en une masse, n'ont pas de caudicules; elles sont pla- 
cées assez loin du bord du rostellum et la masse adhésive n’est 
pas très visqueuse. Retirons un fil de soie qu’on a-enfoncé dans 
l’éperon; si, souvent, on réussit à engluer la pollinie double en 
entraînant la masse adhésive, quelquefois l'opération manque son 
but : la pollinie reste en place sous l’anthère, toujours maintenue 
par son filet élastique. Provoquez en même temps que l’enlève- 
ment de la masse adhésive le redressement de la pointe de 
l’anthère, brusquement celle-ci se soulève, culbute sur son filet 
et montre ses loges vides, ayant projeté les pollinies vers le 
labelle. Comme à ce moment le labelle élastique reprend sa posi- 
tion normale, la pollinie double est souvent rejetée vers le stig- 
mate où elle reste fixée. Là encore la fécondation croisée est la 
règle; mais la fécondation directe n’est pas impossible. 

Pollinisation des Catasetum. — L'étude des Catasétinées avait 
laissé à Darwin une si vive impression qu’il les appelle « les plus 
remarquables de toutes les Orchidées. >» Examinons une de leurs 
fleurs, une fleur myanthe du Catasetum tridentatum (fig. 172, A). 
Son rostellum convexe se recourbe fortement vers le stig- 
mate et vient cacher son disque adhésif en haut de la chambre 


stigmatique. Dans la fleur ouverte, les pollinies déjà libérées, mais 
encore recouvertes par l’anthère, adhèrent au stylet. Celui-ci 
forme une large pièce convexe, occupant toute la surface visible du 
rostellum. Vient-on à toucher l’antenne droite du gynostème, 
immédiatement le stylet, prodigieusement tendu, se détache du 
rostellum, et en même temps se contracte avec une telle violence 
que tout le pollinarium est projeté au loin. Darwin a vu ce polli- 
narium jeté à un mètre de la fleur(1). Les insectes sont attirés 
sur le labelle de cette’fleur par sa consistance charnue et sa 
saveur sucrée. En venant ronger les éminences de ce labelle, il 
est presque impossible qu’ils ne touchent l’antenne droite du 
gynostème ou, à défaut de celle-ci, l’antenne gauche qui, pour 
être moins sensible, est encore très irritable. L'insecte reçoit 
forcément le pollinarium. Celui-ci est lancé de telle manière que 
sa masse adhésive soit antérieure. Comme cette masse se concrète 
en quelques secondes, elle se fixe solidement à l’insecte, qui 
l’emmène avec lui. Surpris par cette balle minuscule, l’in- 
secte s'envole et va butiner une autre fleur. L’anthère et son 
filet sont détachés du gynostème au moment de l'émission du 
pollinarium. Même dans les fleurs hermaphrodites du Catase- 
tum, la fécondation est croisée; à plus forte raison, en est-il 
ainsi pour la fleur monacanthe ou fleur femelle des Catasetum 
(fig. 172, B). Celle-ci ne produit pas de pollen; ce ne peut donc 
être qu’un pollen étranger qui viendra la féconder. Dans cette 
fleur monacanthe, les organes mâles sont atrophiés; les pollinies, 
incomplètement développées, ne peuvent se dégager. Inverse- 
ment, dans les fleurs mâles, tandis que les organes mâles de la 
fleur sont bien développés, et que les antennes du gynostème 
sont très sensibles, les organes femelles sont atrophiés, l’ovaire 
ne se développe pas, le stigmate reste très imparfait, non 
‘ visqueux; il ne peut retenir le pollen qu’un insecte chargé de 
pollinies viendra y apporter. La fécondation est donc exclusive- 
ment croisée chez le Catasetum. 

Chez le Cycnoches ventricosum (fig. 183), la partie sensible de 
la fleur mâle est une petite portion du filet staminal. 

Dans la fleur du Mormodes igneum (fig. 184), la partie sensible 


(1) Exactement à omg2. 


du gynostème est, non plus une paire d’antennes latérales 
comme chez les Catasetum, mais l’articulation du filet staminal 
avec le gynostème. La pointe du gynostème, c’est-à-dire préci- 
sément cette articulation, vient se placer dans une petite entaille 
du labelle. Les insectes sont encore attirés vers cette fleur par 
son odeur et par la consistance du labelle, charnu surtout au 
voisinage de cette entaille. Perché sur le haut du labelle, 
l’insecte avance la tête pour 
ronger cette région plus 
succulente. Il touche la 
pointe du gynostème; aussi- 
tôt le pollinarium est pro- 
jeté. Cette libération des 
pollinies peut se faire spon- 
tanément, mais toujours 


Fig. 183. — Cycnoches ventricosum Lor.: 


inuti = inariu 
inutilement Fine mn A fleur o'; 8 fleur Q; c gynostème de cette 
est perdu. Quoique herma- fleur avec labelle, grandeur naturelle. 


phrodite, la reproduction du Mormodes se fait donc certainement 
par fécondation croisée. 

La pollinisation de l’Orchis mascula. — Dans notre Orchis 
mascula, lorsque la fleur s’épanouit, les loges de l’anthère sont 
déjà ouvertes, les caudicules viennent toucher la surface du 
rostellum en dessous et de chaque côté de son 
bec. L'éperon labellaire ne contient pas de 
nectar libre; en revanche, on trouve une abon- 
dante matière sucrée dans l’épaisseur des parois 
de cet éperon. A cette époque, le moindre 
attouchement fait éclater la surface du rostel- 
lum. Il se sépare en deux disques membraneux, 
qui relient chacun une caudicule à la masse 
adhésive correspondante. La partie antérieure 
du rostellum devient en même temps une lèvre 
mobile qu’on peut abaisser, mais qui se relève re Er 


dès que l’effort cesse. La lèvre relevée recouvre à nouveau les 
masses adhésives et les protège contre la dessiccation. Un insecte 
à la recherche du nectar, se pose sur le labelle, enfonce sa trompe 
dans l’éperon. Dans ce mouvement, il pousse la lèvre antérieure 
du rostellum, qui bouche partiellement cet éperon; il l'abaisse, 


— 206 — 


découvre les masses adhésives; sa trompe les touche; elles s'y 
collent et se concrètent en quelques instants. L’insecte en se 
retirant enlève les pollinies (1); le rostellum vidé se relève un peu; 
il dégage plus largement l’embouchure de l'éperon, en décou- 
vrant le stigmate. Au moment où la pollinie est enlevée, on la 
voit se dresser sur la trompe de l’insecte (fig. 5, B). Si alors, 
l’insecte butinait une autre fleur, la pollinie solidement fixée vien- 
drait occuper son ancienne place; mais le petit disque qui unit la 
caudicule à la pollinie se contracte rapidement et amène la polli- 
nie en avant de la caudicule (fig. 5, c). En entrant dans une autre 
fleur, surtout dans une fleur déjà visitée et par conséquent plus 
ouverte, la trompe de l’insecte amène donc immédiatement au 
contact du stigmate les pollinies qu’elle porte. Le stigmate est 
assez visqueux pour briser quelques fils élastiques de la pollinie, 
pas assez pour retenir celle-ci tout entière. En général, une paire 
de pollinies pourra ainsi féconder plusieurs fleurs. 

Dans l’Anacamptis pyramidalis (fig. 5, H), au lieu d’enlever 
deux pollinies portant chacune leur masse adhésive, nous voyons 
la masse adhésive former une bandelette sur laquelle se fixent les 
deux caudicules (j). La bandelette adhésive entoure, en se repliant, 
l’organe efflé qui l’a touchée. Ce mouvement, qui fait diverger 
fortement les deux pollinies, a pour effet d'amener celles-ci dans 
la position quelles doivent occuper pour s’appliquer exactement 
sur les deux surfaces stigmatiques de la fleur. 

Chez les Orchis, l’Anacamptis, les Ophrys, tout est donc 
disposé pour assurer la fécondation croisée. 

La pollinisation du Listera ovata. — De petits hyménoptères, 
les Hoemitoles, les Cryptus, sont attirés sur la fleur du Listera 
ovata (fig. 42, A) par le nectar que sécrète le sillon médian que 
l’on observe à la face interne de la partie pendante du labelle 
de cette espèce (B). En s’élevant le long du labelle jusqu’à 
l'embouchure de Ia fleur, ces insectes rencontrent le rostel- 
lum, grande lame mince formant voûte au-dessus du stigmate 
(fig. 42, c). L'’anthère, fortement redressée, est protégée par 
une grande expansion marginale du clinandrium. Au moment 


(1) Dans les espèces où l’éperon contient du nectar libre, la solidification 
de la masse adhésive est beaucoup plus rapide. 


— 207 — 


où la fleur s’ouvre, les pollinies (fig. 42, D) sont complète- 
ment libres entre l’anthère et la surface dorsale du rostel- 
lum. Lorsqu'on touche, si légèrement que ce soit, la crête du 
rostellum, on voit sourdre deux gouttelettes visqueuses qui se 
fondent en une seule. La goutte se solidifie en deux ou trois 
secondes. Les bouts des pollinies, reposant sur la crête du 
rostellum, sont englués par le liquide qui vient de jaillir; elles 
se trouvent attachées du coup à l’objet qui a touché le rostellum. 
Un vent un peu fort, une secousse un peu violente, amenant les 
sépales latéraux au contact du rostellum, les pollinies sont enle- 
vées par les sépales. En les voyant ainsi fixées, elles produisent 
l'impression d’un pollen 

lancé à distance. Comme “ 
dans la disposition de la 
fleur jeune, le sommet de 
l'anthère est fortement 
rapproché du bord du 
rostellum; si accidentel- 
lement le rostellum émet 
à ce moment sa masse 
adhésive, le haut de l’an- 
thère est englué par celle- 
ci et les pollinies ne 
pourront être dégagées. 


Elles sont perdues pour 
la fécondation. Pour évi- c 


ter un résultat si désas- Lee 
Le : Fig. 185. — Cephalanthera pallens Ricx.; 4 fleur 
treux dans l'évolution épanouie, vue de profil; B gynostème vu de 
normale de la fleur, face après ablation des sépales et des pétales; 
c vue latérale du gynostème; & anthères; 0 au- 
l’anthère en s’ouvrant  ricule; p pollinies; s stigmate; / segment ter- 


L4 . . I 1 j 
s'éloigne JHiSannent minal du labelle 


du rostellum pour ne pas être saisie par la masse adhésive. 
Après l'enlèvement des pollinies, le rostellum se relève quelque 
peu et rend plus facile l’accès du stigmate. Là encore, la fécon- 
dation est croisée et les insectes sont les agents du transport 
du pollen. 

La pollinisation du Cephalanthera pallens. — Le Cephalanthera 
pallens (fig. 185) est cité comme exemple d’une Néottinée 


— 208 — 


dégradée au point de perdre non-seulement sa masse adhésive, 
mais même son rostellum. Il était donc tout particulièrement 
intéressant de savoir comment s'opérait la pollinisation de 
cette espèce. La fleur (fig. 185, A), est une fleur en casque 
dressée, très fermée. Le gynostème (B, c) est droit, long; il 
montre à sa face postérieure une large surface stigmatique 
discoïde (s). L’anthère dressée, vue par la face postérieure du 
gynostème, est partiellement cachée par le disque stigmatique. 
Le labelle se compose de deux parties : l’inférieure fixe, la supé- 
rieure (/) triangulaire, petite, pouvant se rabattre et former un 
palier à l'embouchure de la fleur. La base du labelle ne secrète 
pas de nectar. L'anthère s'ouvre avant l’éclosion de la fleur, et 
rejette une partie du pollen, qui se groupe en deux colonnes 
verticales presque libres. Dès qu’ils sont ainsi libérés, les grains 
de pollen qui touchent le bord du stigmate, émettent des tubes 
polliniques qui pénètrent profondément dans le tissu de cet 
organe. Le stigmate s’infléchit alors en avant et dégage complè- 
tement les pollinies. La pollinisation sans croisement est donc 
ici la règle. Cependant comme le labelle s’abat pendant un cer- 
tain temps, il est probable que les fleurs sont aussi visitées par 
les insectes; car, sur toutes les fleurs ouvertes d’une grappe, on 
voit que les colonnes de pollen sont rompues, alors que, lorsqu’on 
tient les insectes écartés de ces fleurs, les pollinies demeurent 
intactes. Mais même avec une intervention très efficace des 
insectes pour assurer le croisement, l’absence du rostellum 
correspond à un affaiblissement très grand de la fécondation 
croisée, et à un retour très accentué à la fécondation directe. 
La fécondation directe de l'Ophrys apifera. — L'Ophrys apifera 
présente une exception remarquable : la conformation de sa fleur 
ne diffère essentiellement de celle des Orchis que par son rostel- 
lum à deux bursicules bien indépendantes, et par l'absence 
d’éperon. Ce sont là les caractères génériques. Quant aux carac- 
tères spécifiques de l’Ophrys apifera, le labelle trilobé est villeux 
à sa base; il montre, de plus, deux bosses charnues placées tout 
contre la surface du stigmate. Son gynostème, droit et court, 
porte une anthère fortement courbée vers le labelle, en manière 
de longue potence. Rien au premier abord n'indique que cette 
espèce se comporte différemment de l’Ophrys muscifera, où la 


XIV. 


PL, 


fécondation est croisée. Les loges de l’anthère s'ouvrent d’elles 
mêmes, dès que la fleur est entièrement épanouie. Les gros 
bouts des pollinies se dégagent les premiers et tombent en avant. 
Comme les caudicules sont extrêmement longues et flexibles, 
elles plient sous le poids des pollinies et sont entraînées par 
elles. En quelques heures, les pollinies s’abattent jusqu’à pendre 
librement en face du stigmate. Le plus léger souffle leur fait 
toucher cet organe. La fleur est fécondée par son propre pollen. 
Une des rares Orchidées qui appartient à la fois à la flore africaine 
et à la flore brésilienne, l’Eulophidium maculatum Pfitz., présente 
aussi ce mode d’autofécondation. 

La fécondation directe se présente sous quatre formes chez les 
Orchidées : 

1° La masse pollinique pulvérulente se brise et le pollen tombe 
soit directement sur le stigmate, soit sur le labelle par l’inter- 
médiaire duquel il est porté au contact du stigmate. Les 
Ophrydées et les Néottiées à pollen pulvérulent nous montrent 
de nombreux exemples de cette manière d’être. On la rencontre 
encore dans certains Thelymitra et dans quelques autres formes 
comme le Spiranthes australis. 

2° La masse pollinique tombe entière du clinandrium sur le 
stigmate; ce cas a été peu observé. Fitzgerald, Ridley, Forbes 
ont cru le reconnaître sur le Chsloglottis diphylla, le Phajus macu- 
latus et l'Arundina shpeciosa ; 

3° Le pollen se détache, tandis que la caudicule et le retinacle 
restent attachés à la colonne; tel est le cas de l’Ophrys apifera, 
de l'Œceoclades maculata, du Trichopilia fragrans, d’un Eria. Le 
Spathoglottis Paulinae présente un phénomène plus complexe : 
les pollinies s’avancent tout en restant attachées par leur base à 
la colonne, puis elles se courbent et posent le pollen sur le 
stigmate ; 

4° Les masses polliniques restent dans l'anthère ou le clinan- 
drium, mais le stigmate exsude une si grande quantité de viscosité 
que les grains de pollen sont englués et émettent des boyaux 
polliniques. Il a été observé par Crüger chez Shaïhogloitis pl- 
cata B1., Phajus Blumei Ldl., Eria albido-tomentosa, des Chry- 
soglossum, Schomburgkia, quelques ÆEfpidendrum et quelques 
Catileya. D'autres observateurs l’ont reconnu chez le Thelymitra 


14 


PRO 


longifolia KR. Br., le T. circumsepta Fitzg., des Calochilus, l'Ortho- 
ceras stricta R. Br. et le Goodyera procera Ldl. Ce mode de fécon- 
dation directe est le plus fréquent; il est facilité dans certains 
cas par la suppression du rostellum : Cephalanthera pallens Rich., 
Epipactis viridiflora Rchb. f. 

Autres fleurs intéressantes. — Il nous faudrait encore citer les 
Caleana, dont le labelle irritable s’abat sur l’insecte, le retient 
prisonnier et ne lui laisse d'autre issue qu’un chemin où il ren- 
contre les pollinies qu'il enlève. Chez le Coryanthes maculata, 
les abeilles viennent butiner le pédoncule labellaire. En se 
poussant l’une l’autre, elles tombent dans le gobelet hypochi- 
lien, plein de liquide secreté par les glandes basilaires du labelle. 
Mouillée, incapable de prendre son vol, l'abeille, pour s’échap- 
per, remonte vers le haut de la fleur et vient toucher la masse 
adhésive qui fixe les pollinies sur son dos. 

Signalons encore la curieuse construction de la fleur des 
Cryptophoranthus (fig. 178); les sépales unis de la base au som- 
met ne laissent que deux petites ouvertures. Celle-ci paraît un 
bouton entr’ouvert. C’est par les fentes latérales de ce bouton 
que les insectes pénètrent dans la fleur et assurent sa fécon- 
dation. 

L'impression générale qui résulte de l’examen de ces diverses 
fleurs, nous semble devoir se résumer en ces deux points : la 
fécondation des Orchidées est essentiellement croisée; les 
insectes sont les agents actifs du transport du pollen d’une fleur 
à l’autre, chaque forme de fleur répondant à une tentative 
d'adaptation parfois merveilleusement atteinte. 

En l’absence des insectes qui les visitent habituellement, la 
fécondation de la plupart des Orchidées est donc impossible. 
De là deux constatations, 1° les Orchidées ayant l’aire de disper- 
sion la plus étendue seront susceptibles de fécondation directe: 
Spathoglottis plicata, Sbiranthes australis, Œceoclades maculata ; 

2° Dans nos serres, l’horticulteur doit suppléer à l'absence des 
insectes. Il porte les pollinies d’une fleur à l’autre. La Vanille, 
cultivée pour ses fruits aromatiques à Taïti, à Bourbon, aux 
Indes orientales, etc., ne peut y fructifier si l’homme ne vient à 
son secours. Les insectes de ces pays ne visitent pas ses fleurs, 
bien qu'elles secrètent une grande quantité de nectar, ou bien 


> 211 — 


ne les visitent pas de la manière voulue pour assurer l’enlève- 
ment des pollinies (1). 

Les fleurs toujours fermées. — On doit au célèbre botaniste 
Crüger la connaissance d’un phénomène fort intéressant : il con- 
stata à la Trinidad la présence d'un Schomburgkia, d’un Cattleya 
et d’un Epidendrum, dont certaines fleurs sont toujours fécondes 
bien qu’elles restent constamment closes. M. Anderson a revu le 
même fait chez le Dendrobium cretaceum. On l’a rencontré aussi 
chez le Chysis aurea. Plus récemment Ridley a signalé des faits 
analogues chez un Trichopilia. Rolfe a décrit sous le nom de 
Dendrobium chryseum une fort curieuse espèce dont tous les 
pieds introduits chez M.Veitch présentent des fleurs cleistogames. 
Le rostellum de ces fleurs est réduit au minimum. Il est 
probable que dans ce cas, comme dans celui du D. Brymerianum 
(fig. 159) qui parfois donne des fleurs cleistogames, on ne 
tardera pas à importer des specimens à fleurs non cleistogames. 

Dans ces fleurs, constamment fermées et cependant fertiles, 
la fécondation directe est seule possible. Les pollinies étant 
encore £n situ, les grains de pollen ont germé, les boyaux polli- 
niques ont gagné le stigmate et le canal stylaire. Ces mêmes 
espèces ont presque toutes d'autres fleurs qui s'ouvrent à l'air. 
Leur cas rappelle donc ceux de l'Oxalis sensitiva et du Lathyrus 
Nüissolia, dont les fleurs ont toutes la même structure, mais 
dont quelques-unes ne s’ouvrent jamais et produisent cependant 
de bonnes graines. 

Hybrides naturels. — La fécondation croisée, opérée par 
l’homme dans les cultures, par les insectes dans l’état de nature, 
amène comme conséquence de fréquentes et perpétuelles hybrida- 
tions, une étonnante multiplicité de formes et de variétés. Plus 
qu’en toute autre famille, la ligne de démarcation entre l’espèce 
et la variété hybride est fugace et difficile à tracer (2), d'autant plus 
difficile même que si l’origine des hybrides obtenus dans les serres 
peut être connue avec quelque certitude, grâce à la bonne volonté 


(1) C’est Charles Morren, qui le premier en Europe, féconda et obtint, 
en 1837, des gousses de vanille au jardin botanique de l’Université de Gand. 
(2) Tous les orchidophiles connaissent les patientes et judicieuses recher- 


ches poursuivie dans cette voie par l'excellente Orchid Review publiée à 
Londres. 


— 212 — 


et à la loyauté des semeurs honnêtes, il est souvent impossible 
de déterminer les parents de l’hybride naturel. Cette difficulté 
devient insurmontable dans certains cas. Vers 1850, François 
Devos, voyageur-collecteur de la maison Ambroise Verschaffelt 
de Gand, rencontra dans l’île Sainte-Catherine au Brésil une 
Orchidée admirable, un Cattleya aux grandes fleurs colorées, 
auquel Lemaire donna le nom bien mérité de Cattleya elegans. Son 
origine hybride ne fut même pas soupçonnée. On ignorait à ce 
moment l'existence du Laelia purpurata et du Cattleya guttata 
ar. Leopoldi, ses deux parents. Le genre Odontoglossum ne 
nous réserve-t-il pas des surprises pareilles? Quand on voit les 
formes diverses que revêtent les fleurs de l’Odontoglossum cris- 
pum (fig. 189), ne devons-nous pas nous demander jusqu’à quel 
point les Odontoglossum luteo-furpureum, Lindleyanum, odoratum 
et tant d’autres méritent d’être conservés au rang d'espèces 
distinctes ? Question délicate et bien difficile à résoudre avant de 
posséder la série des formes intermédiaires! 

Comme toutes les plantes dont l’hybridation croisée est la 
règle, les Orchidées présentent une variété infinie d’'hybrides; 
celles-ci sont parfois le fruit de la fécondation d’espèces appar- 
tenant à des sections ou à des genres différents : Orchis X Scrapias, 
Orchis X Habenaria, p. ex. : le plus souvent les hybrides sont 
procréés par des espèces affines ou des variétés d’une même 
espèce, et ce cas est si fréquent qu'il est dans certains groupes 
orchidéens presque impossible de trouver deux plantes à fleurs 
identiques, à moins qu’elles ne soient des boutures ou des reje- 
tons de la même plante mère. 


VI. PARFUMS ET COLORIS DES FLEURS. — Tout ce que nous 
avons vu de la fleur des Orchidées nous a donné l’impression de 
fleurs à pollinisation croisée, les insectes étant les agents prin- 
cipaux du transport des pollinies. Les moyens d’attraction desti- 
nés à provoquer la visite des insectes seront donc multiples et 
variés. Nous avons, en passant, signalé les éperons nectarifères 
qui sécrètent un liquide sucré et qui déterminent la venue de 
certains visiteurs ailés en un point déterminé de la fleur, et 
souvent par un chemin qui les obligera fatalement à enlever les 
pollinies soit à l’aller, soit au retour. Les pièces mobiles si 


remarquables chez certaines fleurs à teintes vertes, peu visibles, 
ont manifestement le même but. On pressent dès lors que les 
deux grands moyens d'attraction employés d'ordinaire par la 
nature pour assurer aux fleurs la visite des insectes, le coloris et 
les parfums, doivent être extrèmement répandus et extrêmement 
variés chez les Orchidées. Les couleurs vives, les couleurs claires 
attireront le regard de l’insecte, comme le font nos drapeaux, nos 
enseignes brillantes. Les parfums révèleront à distance à l’insecte 
l’existence de la fleur 
qui lui fournit son nectar 
préféré. Il la cherche, 
trouve la hampe florale 
qui la porte, butine les 
diverses fleurs et, dans 
son égoïsme inconscient, 
dépose sur le stigmate 
encore vierge le baiser fé- 
condant du pollen enlevé. 

A l'exception du noir, 
toutes les couleurs du 
spectre solaire, tous les 
feux éclatants du prisme se retrouvent sur le périanthe des 
Orchidées. A côté des fleurs éblouissantes, dans leurs blan- 
cheurs éburnéennes, de l’Angraecium eburneum(x), nous trouvons 
le labelle bleu et les périanthes bleuâtres ou gris perle violacé du 
Saccolabium (Rhynchostylis) cœlestis, du Vanda cœrulea (fig. 131) 
et du Bollea cœlestis (fig. 186), les délicats labelles du Paradisan- 
thus Bahiensis et de l’A ganisia cyanea, les brillantes fleurs jaunes 
de l'Oncidium varicosum, de l’Anguloa Clowesir, du Caïtleya citrina, 


Fig. 186. —" Bollea cœlestis Rous. f. 


(1) Orchidées à fleurs blanches : Odontoglossum crishum (Alexandrae); 
Acranthus Leonis; Anguloa uniflora, var. eburnea; Calanthe (Preptanthe) niva- 
Uis, Turneri; Caïtleya labiata var. Trianae chocoensis, Dominyana alba; Cattl:ya 
labiata, var. Percivaliana alba; Cœlogyne cristata alba; Cymbidium eburneum ; 
Cyperorchis Mastersii; Cypripedium niveum; C. Sedeni candidulum; Dendro- 
bium Dearei, D. infundibulum, D. formosum, D. Famesianum ; Laclia albida, 
L. anceps alba, Ainsworthiana, etc., L. elegans alba; Lycaste Skinneri, var. alba, 
L. Harrisoniae alba: Masdevallia tovarensis; Odontoglossum Pescatorei, O. pul- 
chellum, O. Roezlii album, Miltonia vexillaria alba; Phalaenopsis Aphrodite ; 
Stanhopea Lowi, var. Amesiana. 


les sépales vivement colorés d'orange des Masdevallia Veitchi, 


Fig. 187. — Odontoglossum triumphans Loz., fleur. 
les éclatantes fleurs écarlates du Sophronitis militarts, de l’Ada 
aurantiaca, du Masdevallia ignea(i), etc., etc. 

Sans sortir du même genre, nous 
trouverions une variation de coloris 
étonnante. Comparez les fleurs du 
Phalaenopsis Schilleriana à celles du 
P. amabilis : même forme, même 
port, même facies. Seule la couleur 
des fleurs varie. Celles du P. Schil- 
leriana ont les tons doux d’une rose 


sauvage qui s’entrouvre; tandis 
Fig. 187bis, — Labelle de l'Odon- que, Sur les fleurs du P. amabilis, 

toglossum triumphans Ldl. l’aile nacrée des grands papillons 
blancs des tropiques semble avoir laissé, en les frôlant, son 
éclatant duvet. 


(1) Orchidées à fleurs orange et écarlate : Ada auvantiaca; Epidendrum 
vitellinum, E. aurantiacum, E. cinnabarinum; Laelia cinnabarina, L. flammea, 
L. harpophylla; Masdevallia coccinea, M. ignea, M. Veitchiana; Renanthera 
coccinea ; Sophronitis grandiflora, etc. 


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celle des Masdevallia ? Toute la gamme des couleurs 


comparable à 


— 216 — 


s’y trouve; depuis les teintes sombres et neutres des Masdevallia 
Chimaera, M. spectrum, etc., depuis la blancheur du M. tovarensis, 
rappelant le doux éclat des étoiles aurorales, jusqu’à la splendeur 
du Masdevallia Davisii, au périanthe formé d’or liquéfié, jusqu’au 
Masdevallia ignea, dont l'’ardent vermillon est relevé par des 
lignes cramoisies longitudinales, et enfin, ces admirables Masde- 
vallia Lindenti et Harryana nous offrant toutes les nuances inter- 
médiaires entre le vermillon et le pourpre sombre, auxquelles 


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Fig. 189. — Polymorphisme des fleurs de l'Odontoglossum crispum Ldl. 


se mêlent les multiples combinaisons de bleu violet clair, lie de 
vin, améthyste, etc. 

Dans un grand nombre d'Orchidées, des macules vives semées 
sur les pièces du périanthe ajoutent encore à l'effet bizarre ou 
brillant de la fleur. Tous les amateurs connaissent la beauté des 
racèmes (fig. 188) de l’Odontoglossum crispum. Que de fois une 
variété ne paraît-elle pas, à leurs yeux, admirable, parce que les 
divisions florales blanches ou rosées sont couvertes de macules 
bizarres, variant de place, de forme et de coloration de fleur à 


fleur (fig.189). Quin'aadmiré l’Odontoglossum triumphans (fig.187), 
cette superbe espèce de serre froide aux larges fleurs jaune d’or, 
barrées et maculées de brun rougeâtre? Dans quelle collection 
d'Orchidées, le Cattleya guttata n’attire-t-il pas les regards quand 
c’est une variété d’élite qui fleurit, comme le C. g. var. Prinzit 


(fig. 190)? Alors même que la teinte fondamentale du périanthe est 


neutre où vert olive, comme dans le Catileya Acklandiae (fig. 191), 
les nombreuses macules pourpres brunâtres donnent à la fleur 
un cachet particulier; celui-ci est plus remarqué encore lorsque 
sur un fond blanc 
ou jaune appa- 
raissent de nom- 
breuses taches 
aux formes bizar- 
res et variables, 
brunes, pourpres, 
presque noires, 
comme dans ces 
curieuses Cypri- 
pédinées originai- 
res de l’Insulinde. 
Le Paphiopedium 
bellatulum (fig. 
192) est le type 
de cette section, 
dont on cultive 
dans les serresun 
grand nombre de 
variétés d’élite : 
P. concolor, P. niveum, P. Godefroyae, etc. Dans cette énuméra- 
tion trop rapide, ‘les fleurs du Bulbophyllum macranthum Ldl. 
méritent une mention spéciale : d'un vert sombre au milieu, elles 
deviennent rouge vineux vers les bords; en même temps, elles 
sont parsemées d’une infinité de points ronds sombres, donnant 
à l’ensemble de la fleur l’aspect curieux des fleurs de Séapelia. 
Parfois, mais rarement, la partie externe du périanthe est 
seule brillante et colorée : Masdevallia Veitchiana (fig. 153). 
Presque toujours, le coloris du labelle surpasse en éclat et en 


Fig. 190. — Cattleya guttata Lo. var. Prinzii Rous. f. 


— 218 — 


beauté, celui des autres pièces du périanthe. Quelle merveilleuse 
palette serait celle réunissant toutes les teintes dont la Nature 
a orné ces lames végétales ! Les unes sont unicolores, blanches 
avec des reflets nacrés, roses, pourpres avec des chatoiements 
métalliques, jaunes comme l'or; les autres sont multicolores, 
traversées de lignes, de traits, de paraphes, de veines plus 
foncées ou plus éclatantes, fixant sur le duvet satiné de leur 
limbe éclatant, le feu qui jaillit du froissement des épées ou 
l’éclair teinté de violet qui s'échappe des nuées électriques. 
Parmi les plus beaux labelles, le plus remarquable est le labelle 


du Catileya labiata (vera). Allongé, s’évasant en pavillon de 
trompe, présentant sur ses bords une série d’ondulations crispées 
mettant des reflets plus ou moins assombris dans la teinte géné- 
rale, ce labelle semble découpé dans un manteau de pourpre 
épiscopale, traversé par une multitude de veines d’un beau rouge 
byzantin ou d’un rouge pourpre, venant mourir lentement en 
teintes affaiblies sur une marge blanche, éburnéenne, nacrée, 
tandis qu’une bande jaune d’or à reflets éclatants traverse la 
gorge dans toute son étendue et la couvre d’un réseau de fils d’or. 
Citons encore le labelle du Sobralia macrantha : entouré de pièces 


florales violettes, son limbe élargi, ondulé, crispé, échancré, 
nous montre le flamboiement des ors et des satins pourpres et 
roses, mêlés dans la plus délicate et la plus étincelante fantaisie. 

Parmi les Dendrobium, nous trouvons des labelles merveilleux, 
colorés de la manière la plus bizarre et la plus vive : D. nobile, 
crassinode, Bensoniae, Falconeri, gratiosissimum, Loddigesii, Lowii, 
Phalaenopsis, thyrsiflorum, Wardianum, etc. La plupart tirent leur 
beauté des grandes taches de couleurs vives qui se trouvent à la 
base de leur labelle : tel est le Dendrobium Dalhousieanum 
(fig. 193), aux fleurs jaune nankin veinées et teintées de rose, 
se distinguant surtout par les deux macules pourpre marron qui se 
trouvent à la base du la- 
belle. Un grand nombre 
de labelles sont velus, 
couverts de poils,comme 
celui du Bifrenaria Har- 
risontiae (fig. 194). 

Le coloris de la fleur 
varie d’intensité d’après 
l’époque de l’année, la 
force, la santé de la 
plante : on comprend 
dès lors l'influence du 
mode de culture, de la 
chaleur, de l’aérage, de 
la lumière donnée à 
l'Orchidée. Fig. 192. — Paphiopedium bellatulum (Rcus. f.) 

La couleur varie souvent avec l’âge de la fleur: certaines fleurs, 
blanches au moment de l’épanouissement, se colorent en vieillis- 
sant : Cattleya Loddigesii. L'exemple le plus connu des horticul- 
teurs est celui du Phajus maculatus. En se fanant, cette fleur 
passe du jaune au vert, puis au bleu indigo foncé. Cette altéra- 
tion tient à la présence de granules d’indigo blanc ou indican 
dans son périanthe. Sous l’action de l’oxygène, l’indigo blanc 
s’oxyde et se transforme en indigo bleu. En froissant les pétales 
entre les doigts, le bleuissement est instantané. 

A côté des Orchidées dont nous venons de parler, il convient 
de signaler quelques Orchidées dont les fleurs sont remarquables 


— 220 — 


tant à raison de leur coloris que de leur forme étrange; la plu- 
part nous sont connues : ce sont les Angraecum (Macroplectrum) 
sesquipedale (fig. 18), l'Anguloa Clowesii (fig. 181), le Dendrobium 
Brymerianum (fig. 159), les Masdevallia bella et Chimaera, les 
Paphiopedium caudatum (fig. 71) et P. c. var. Lindeni, le Peristeria 
elata (fig. 94) et les Stanhopea (fig. 129 et 130). 

La couleur éclatante ou bizarre des fleurs attire les insectes; 
moins toutefois que leur odeur suave, pénétrante, forte, que 
leurs miels aromatisés, visqueux ou gélatineux. Le parfum des 


Fig. 193. — Dendrobium Dalhousieanum PaxrT. 


Orchidées varie à l'infini, tantôt fort et pénétrant, tantôt doux 
et suave, si suave que, l’ayant respiré un instant, on n’en oublie 
jamais la voluptueuse senteur. Les Orchidées tropicales n’émet- 
tent pas seules de doux parfums : l’odeur vanillée du Nigritella 
angustfolia, originaire des Alpes européennes, n’a-t-elle pas valu 
à cette fleur son nom populaire de Brunella ou Braünli? 

Il ne faut pas être orchidophile passionné pour se rappeler 
la forte senteur des Sianhopea, que Bateman, de fort méchante 
humeur, compara, un jour, à l’odeur d’un magasin de droguiste. 


— 221 — 


Un racème fleuri de cette Orchidée suffit à embaumer toute 
une habitation. Un grand nombre d’Orchidées émettent des 
senteurs plus douces et plus suaves. Citons parmi les plus 
agréables, les parfums répandus par l’Aerides odoratum Lour., 
les Brassavola, le Cattleya guitata Leopoldi, le Dendrobium ameæ- 
num, un grand nombre d’Epidendrum, le Houlletia odoratissima 
(fig. 194%), le Laelia autumnalis (fig. 195), le Lycaste aromatica, 
le Bifrenaria Harrisoniae, le Maxillaria Turneri, le Trichosma 
suavis, l'Odontoglossum Roezlii, les Vanda densiflora, suavis, 
quadricolor, insignis, le Dendrobium cristallinum, etc. Les fleurs 
des Laelia anceps et albida émettent une odeur se rapprochant de 
celle du miel frais. Un grand nombre de fleurs d’Orchidées 
évoquent à l'esprit des amateurs, le souvenir d’autres espèces 
végétales. Nous en trouvons dont l’odeur délicate et douce rap- 
pelle les senteurs de la bruyère : Galeandra Devoniana; de l’aubé- 
pine : Barlingtonia fragrans, Trichopilia suavis ; du chèvrefeuille : 
Liparis pendula; de l'églantier : Dendrobium 
Wardianum; du Daphné : Odontoglossum 
maculatum; de la jacinthe : Calliopsis 
hyacinthosma; de la jonquille : Caïtleya 
citrina, Sobralia dichotoma, Milionia More- 
liana; du lis blanc : Macroplectrum sesquipe- 
dale ; de la giroflée : Lycaste cruenta, Vanda 
suavis, V. tricolor; du lilas: Angraecum : | . 

. se Fig. 194. — Labelle da Bir- 
cburneum; de l’oranger : Pilumna nobilis; frenaria HarrisoniazLoz. 
de la primevère : Bletia campanulata; de l’héliotrope : Epidendrum 


auritum; de la tubéreuse : Brassavola Digbyana, Laelia elegans; 
du muguet : Aerides pallidum, Cælogyne cristata, Odontoglossum 
Pulchellum majus; de la violette : Rodriguezia rigida, Epidendrum 
tonosmum;: de l’anis : Epidendrum anisatum; de la Pensée : 
Aerides Fieldingii. Plusieurs Orchidées comme Caïileya quadri- 
color, Epidendrum phœniceum var. vanillosmum, Polycycnis lepida, 
Vanda tricolor cinnamomea, Gymnadenia odoratissima, émettent 
une odeur fine et ambrée se rapprochant de celle de la vanille. 
D'autres rappellent la senteur de certains fruits, tels que le 
melon : Maxillaria nigrescens; l'amande : Cyperorchis Mastersii; 
la pomme : Aerides odoratum; la poire mûre : Gongora iruncata; 
le citron : Rodriguezia candida, Ornithocephalus myrticola ; 


> PE — 


l’essence d'amandes amères : Cæœlogyne asherata; ou bien celle de 
produits pharmaceutiques ou commerciaux, tels que l’éther : 
Collabium nebulosum; le genièvre : Peristeria cerina; le cuir de 
Russie : Vanda gigantea; le bois de Santal : Mormodes pardinum; 
le chocolat : Brassia cinnamomea, etc. 


Fig. 1o4bis. — Houlletia odoratissima Linv. 

Certaines odeurs sont indéfinissables : nous citerons, par 
exemple, celle qu’exhale l’Epidendrum virens, où l'orchidophile 
croit reconnaître l’odeur du foin mélangée à celle de la berga- 
motte; celle de l'Odontoglossum Halli, qui fait songer, dit-on, au 


— 223 — 


parfum un peu brutal qui s’exhale d’un champ de fèves en 
fleurs; celle du Dendrobium moschatum, que Bateman compare 
à la senteur du musc et Reichenbach à celle de la rhubarbe ! 

Il faudrait encore ajouter à cette liste de fleurs parfumées, 
celles qui possèdent des parfums très légers, si subtils, dit-on, 


que seul le jardinier qui a cultivé la plante les perçoit : l’'Odon- 


Fig. 195. — Laelia autumnalis Lo. 


toglossum citrosmum émet un vague parfum citronné; et le 
Phalaenopsis amabilis réunit, disait un jardinier, l’odeur du 
Daphné des Indes à celui de la violette des Alpes! 

Mieux vaut encore pour elles émettre ces parfums vagues, 
éphémères, que de se voir rangées dans la catégorie des Orchi- 
dées à odeur peu agréable comme Coryanthes speciosa, Trichopilia 
crispa, Loroglossum hircinum. Les beaux Caïtleya Acklandiae 
exhalent une odeur poivrée, il est vrai, mais plus supportable 


que les fleurs précédentes et quelques autres qui évoquent le 
souvenir de la forte senteur des fauves : Cœlogyne flaccida; des 
punaises : Orchis coriophora; de la viande en putréfaction : 
Bulbophyllum Beccarii; ou celle plus immonde encore du bouc, 
comme notre Orchidée indigène, l’Himantoglossum hircinum. 

L’intensité et la nature du parfum de certaines Orchidées 
varient selon la période de la floraison, même selon l'heure du 
jour. Beaucoup d'amateurs ont pu le constater sur le Dendro- 
bium nobile, qui rapelle tour à tour la Primevère, le miel doux et 
l'herbe fraîche coupée. M. Éd. André, le charmant architecte- 
botaniste, dont le rare esprit d'observation est si connu, a fait 
de fort curieuses remarques sur la nature des parfums orchi- 
déens. Il a constaté que certaines fleurs, celles du Dendrobium 
glumaceum, émettaient le parfum de l’Héliotrope le matin et 
celui du Lilas le soir. Le Phalaenopsis Schilleriana donne l'illu- 
sion du Muguet à l’aube du jour, et de la Rose au crépuscule. 
L'Angraecum (macroplectrum) sesquipedale exhale, pendant la 
nuit, un parfum rappelant celui du Lis blanc. 

En règle générale, le parfum des Orchidées se dégage avec le 
plus de force le matin et le soir, parce que la lumière du jour 
tend à détruire les produits odorants dérivés de la chlorophylle, 
et à les transformer en baume ou en résine. Le matin, l'odeur 
est généralement plus forte, les matières tannoïdes ayant été 
formées en plus grande quantité pendant la nuit. 


VII. DURÉE DES FLEURS. — La fleur des Orchidées a une 
durée des plus variables selon les espèces, mais en général elles 
demeurent longtemps épanouies. Parmi les fleurs de courte durée, 
nous citerons celles des Séanhopea, des Gongora, des Coryanthes, 
de certains Mormodes, des Cirrhopetalum, des Sobralia, des 
Restrepia. Elles se flétrissent au bout de quelques jours. Ce sont 
des exceptions. La plupart des Orchidées gardent pendant des 
semaines et des mois, dans nos serres, leurs fleurs infécondes, 
dans tout l'éclat de leur merveilleuse beauté. Qui n’a été surpris 
de la longue durée des fleurs des Cypripedium? Il n’est pas diffi- 
cile de les conserver coupées pendant plus d’un mois, si l’on 
prend soin de rafraîchir de temps à autre la section de la hampe 
florale plongée dans l’eau. Les fleurs de certaines Cypripédinées, 


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punaises : Orchis coriobhora; dé la viande en Me " 
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varient selon la période de la floraison, même selon l'heure lu 
jour. Beaucoup d'amateurs ont pu le constater sur le Dendr 
binm nobile, qui rapelle tour à tour la Primevère, le miel:c 
l'herbe tratohe coupée. M. Éd. André, le charmant hi 
botaniste, dont le rare esprit d'observation est si connu, à 1 
de fort curieuses remarques sur la nature des parfum 8 
déens, Il a constaté que certaines fleurs, celles du Dent 
glumaceum, émettaient le parfum de l’Héliotrope le matin et 
celui du Lilas le soir. Le Phaluenopsis Schilleriana donne: il 
sion du Muguet à l’aube du jour, et de la Rose au 
L'Angraecum (macroplectrum) sesguipedale exhale, pendant 1 
nuit, un parfum rappelant celui du Lis blanc. “ 

En règle générale, le parfum des Orchidées se dégage aveël ï s 
plus de force le matin et le soir, parce que la lumière du joi | j 
tend à détruire les produits odorants dérivés de la chlorophyl 
et à les transformer en baume ou en résine. Le matin, l'ode 
est généralement plus forte, les matières tannoïdes ayant 6 
formées en plus grande quantité pendant la nuit, 


VII. Durée pes #LauRs. — La fleur des Orchidées a 
durée des plus variables selon les espèces, mais en général x 
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nous citerons celles des Sianhopea, des Gongora, des Coryanthes, * 1 
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celles du Lycaste Skinneri (fig. 196), du Cymbidium Lowianum 
(fig. 161), et des Phalaenopsis (fig. 39 et 54), demeurent épa- 
nouies pendant deux ou trois mois. 

La vie du labelle ne dépasse pas, en général, celle des autres 
divisions du périanthe; rarement, comme dans le Phajus tetra- 


Fig. 196. — Lycaste Skinneri Loi, fleur. 


gonus, il persiste après elles; le plus souvent, il se flétrit le 
premier, et même longtemps avant les pièces voisines. Sa 
mission indicatrice ou tentatrice accomplie, les insectes ayant 
visité et fécondé la fleur, il semble que son rôle soit terminé. 
Un des plus curieux exemples de ce flétrissement précoce du 
labelle nous est fourni par le Megaclinium falcatum. Les fleurs 


13 


— 226 — 


de cette Orchidée restent ouvertes dix à douze jours; mais le 
curieux petit labelle, aux mouvements étranges, spontanés, ne 
reste en complet état de: fraîcheur que pendant deux jours. 

Fécondées, les fleurs se fanent, les couleurs se ternissent, le 
parfum disparaît : quelques-unes (Epidendrum) deviennent coria- 
ces et se dessèchent. Le plus souvent, le périanthe flétri cou- 
ronne le fruit mur; presque toujours l'enveloppe florale tombe 
entière. 


VIII. DUPLICATURE DES FLEURS. — La duplicature des fleurs 
se présente fort rarement chez les Orchidées. On a surtout ren- 
contré des fleurs à staminodes. Un exemple remarquable de 
duplicature a été signalé dans le Gardeners’ Chronicle. M. Rolfe, 
excellent observateur toujours à l'affût des phénomènes intéres- 
sant l’orchidéologie, a trouvé une fleur d’Epidendrum vitellinum 
présentant le remplacement du labelle et du gynostème par 
des pétales colorés. Le labelle était représenté par un pétale 
semblable aux deux autres divisions internes du périanthe et 
plus étroit que les divisions externes. Le gynostème avait 
disparu; à sa place existaient six petits pétales indépendants, 
atteignant la moitié de la longueur des pétales ordinaires, 
les intérieurs étant toujours plus petits que les extérieurs. On 
pourrait être tenté d'homologuer ces six pièces aux six pièces 
admises dans la constitution du gynostème théorique. Il nous 
paraît prudent de n'avoir recours à ces formes monstrueuses 
qu'avec une très grande réserve. Au point de vue horticole, le 
fait est plus intéressant peut-être, car il suffit qu’il marque un 
profond ébranlement du type floral pour rendre possible la pro- 
duction de formes entièrement nouvelles (1). 


(1) L. DE ViLMoRIN : L'hérédité chez les végétaux. Revue scientifique, 1880, 
p- 844. 


GITAPITRE X. 


LA GRAINE. — LE FRUIT. 


I. EMBRYOGÉNIE DES ORCHIDÉES. — Variété des types de déve- 
loppement. — Les principales notions que nous possédons sur 
l’'embryogénie des Orchidées sont dues à l'illustre directeur du 
Jardin botanique de Buitenzorg, M. Melchior Treub, un des 
savants dont s’enorgueillit à si juste titre la botanique néer- 
landaise (1). M. Treub est d’ailleurs aussi connu du monde horti- 
cole que du monde savant. Sa grande science n’a d’égale que 
l’inépuisable obligeance avec laquelle il se met à la disposition de 
tous, botanistes ou horticulteurs, pour leur fournir les matériaux 
de leurs études ou de leurs cultures. 

Malgré l’homogénéité si profonde de la famille des Orchidées, 
le développement embryogénique présente une assez grande 
variété de types, bien faite pour surprendre au premier abord. 
On sait toute l'importance qu’on est tenté d’attacher aux premiers 
stades du développement des êtres vivants, dans toute classifica- 
tion zoologique ou botanique. Avec raison, on admet que tous les 
êtres appartenant à une même souche, surtout quand celle-ci est 
très différenciée — et tel est le cas des Orchidées — doivent 
avoir une marche de développement très uniforme. L'expérience 
a déjà montré cependant que dans des groupes à genres nombreux, 


(1) Ceux de nos lecteurs désireux d'approfondir cette question, trouveront 
de précieuses et très bonnes figures, dans l’ouvrage de TREUB : Notes sur l’em- 
bryogénie de quelques Orchidées. Verhandelingen der Koninklijke Academie van 
Wetenschappen, XIX, Amsterdam, 1870. 


— 228 — 


comme les Légumineuses, comme les Orchidées, il y a parfois 
des variations extrêmement étendues. 


IT. LA GRAINE. — Les graines des Orchidées sont fort petites, 
membraneuses, excessivement légères, fusiformes. Elles sont 
formées extérieurement d’une couche de grandes cellules tégu- 
mentaires, à parois minces, pleines d’air, et intérieurement d’un 
globule dense qui n’est autre chose que le corps de l’embryon. 


L'embryon des Orchidées est très petit, globuleux, composé 
de quelques cellules, sans point 
de végétation différencié. Sa par- 
tie inférieure n’est indiquée que 
par le suspenseur. Chez les 
Listera, cette différence s’atténue 
beaucoup. Au contraire, dans le 
Sobralia macrantha, l'embryon 
plus élancé montre un point de 
végétation localisé et un com- 
mencement de différenciation en 


Fig. 197. — a Embryon tel qu'on le °*° hypocotylé, cotylédon et 


trouve dans la graine mûre de So- région gemmulaire (fig. 1 . 
bralia macrantha ; b sommet de cet 8 8 (fig. 197) 


embryon grossi; @ coupe longitudi- - L 
nale de l'embryon, Chez les Vanilles, le tégument 


séminal paraît profondément modifié; la graine est noire, dense; 
elle craque sous la dent. C’est une manière d’être exceptionnelle 
pour une graine d’Orchidée. En réalité, elle résulte d’une très 
légère modification du type général. En effet, il suffit qu’il n’y ait 
pas de décollement entre les cellules tégumentaires superficielles 
et les cellules profondes. De plus, les épaississements en hélice 
des cellules superficielles, au lieu d’être très nombreux et 
très minces, sont ici larges et très épais. L’assise tégumentaire 
enfin, au lieu d’être pleine d'air, demeure remplie de matières 
colorantes brun-noir(1). 

La dissémination des graines d’Orchidées se fait par le vent : 
le fruit s’ouvrant de lui-même par dessiccation, au moindre 


a — ——_—— = £ 


() C’est par le même procédé que les Cyrtosia, genre très voisin des 
Vanilles, nous montrent un tégument séminal crustacé. 


AE — 


souffle, les graines produites en nombre prodigieux sont disper- 
sées au loin. Pour la vanille, l’arome du fruit d'une part et la 
structure ligneuse du tégument séminal semblent indiquer que 
les animaux interviennent dans la dissémination de cette espèce. 

La graine des Orchidées n’a pas d’albumen; ce n’est là qu’un 
caractère négatif. 


III. LE FRUIT. — Le fruit des Orchidées est toujours une 
capsule membraneuse, coriace ou charnue, surmontée le plus 
souvent du gynostème formant bec. Sa forme et sa longueur 
sont très variables, Le plus long fruit connu est la gousse 
de la Vanille, Vamilla planifolia (fig. 201). Quelques autres 
fruits sont odorants : tels par exemple ceux du ; 
Selentpedium Isabelianum(), le Baunilhasinha 
des indigènes brésiliens, aussi parfumé que la 
gousse de la Vanille, et celui du Leptotes bicolor 
qui rappelle l’odeur particulière de la Flouve 
odorante (Anthoxanthum odoratum). 

Ordinairement, à sa maturité (fig. 198), le fruit 
s’ouvre par six fentes longitudinales, de manière 


à séparer trois valves larges et trois valves 

étroites, qui restent unies au sommet et à la Fig. 198. — Fruit 
déhiscent d'un Or- 

base de la capsule. Les valves larges portent les chis. 

placentas en leur milieu ; les valves étroites correspondent aux 

nervures médianes des trois carpelles. Le Milionia réalise ce 

type dans toute sa pureté. 

Dans le genre Lepiotes, les six valves se séparent l'une de 
l’autre, même au sommet, et se rabattent fortement en arrière. 
Chez le Lockhartia, la capsule se fend en trois valves seulement, 
les lignes de déhiscence correspondant aux nervures médianes 
des trois carpelles. Dans les Pleurothallis, la capsule ne présente 
que deux lignes de déhiscence, comme si deux des valves du 
fruit des Lockhartia demeuraient coalescentes, la troisième 
devenant toujours libre. Enfin le fruit des Angraecum n'a plus 
qu’une seule fente. 


(1) Cocnraux, Orchidées du Brésil, I, p. 16. Vanille en portugais se dit 
baunilha ; baunilhasinha — petite vanille. 


— 230 — 


. Quand le fruit est charnu, comme chez les Cyrtosia, il laisse 
échapper ses graines par sa putréfaction, ou s’ouvre d’une façon 
incomplète par deux ou trois valves partant du sommet. 

Le temps nécessaire à la maturation des fruits est extrême- 
ment variable, mais généralement très long. Les espèces hâtives, 
comme Calanthe, Masdevallia, arrivent à complète maturité en 
trois ou quatre mois. Dans les Lycaste (Lycaste tetragona), 
les Phalaenopsis (P. amabilis, P. Schilleriana), les Zygopetalum, 
les Stanhopea (S. oculata), le fruit mûrit en cinq à six mois. 
L'Angraecum Macroplectrum sesquipedale réclame sept mois pour 
atteindre la maturité; les Cypripedium mettent de 8 à 15 mois; 
le Peristeria elata, l'Odontoglossum vexillarium, huit mois; le 
Laelia purpurata, de 9 à ro mois. Les fruits d’un grand nombre 
d’Orchidées ne viennent à maturité qu'après dix mois: Cattleya 
bicolor, C. Gigas, C. Loddigestii, C. Percivaliana, C. Warneri, Onci- 
dium Papilio. Il faut onze mois au Laelia crispa, au Cattleya Mos- 
siae. La plupart des Cattleya, l’Anguloa Clowesi, le Bifrenaria 
Harrisoniae, le Chysis bractescens, le Dendrobium aureum et de 
nombreux Odontoglossum ne sont mûrs que douze mois au moins 
après le moment de la fécondation. Le Laelia Peyrinii met dix-huit 
mois et le Laelia Pinelii vingt mois avant d’arriver à maturité. 

Le nombre des graines contenues dans les capsules d’Orchi- 
dées est prodigieux. La capsule de l’Ophrys aranifera en ren- 
ferme 3000; celle du Cephalänthera grandiflora en contient 
6000, et celle de l'Orchis maculata 6200. On évalue à plus de 
deux millions celles qui sont contenues dans une capsule de 
Miltonia ou de Stanhopea, et à plus de 74 millions le nombre des 
graines produites par un pied d’Acropera. Si toutes ces graines 
bien conformées, fertiles par conséquent, germaient et se déve- 
loppaient normalement, la multiplication des Orchidées serait 
telle, observe Darwin, qu’à la quatrième génération, les descen- 
dants d’une plante couvriraient d’un tapis vert uniforme la 
surface entière du globe. La difficulté de la fécondation directe, 
l'extrême lenteur du développement du fruit, le temps très long 
que les Orchidées mettent à se développer, enrayent et annulent 
cette prodigieuse puissance de dispersion. 


CHSEEFKRE XIE 


LA GERMINATION DES ORCHIDÉES. 


GERMINATION. — La germination des Orchidées est géné- 
ralement très lente : c'est un des motifs pour lesquels elle n’a 
été étudiée que dans un petit nombre d'espèces. Elle se fait à la 
surface du sol. La graine ne supporte pas d'être enterrée. Le 
délai de germination est très variable : d'ordinaire la graine se 
gonfle au bout d’un mois à six semaines. 

Le premier acte de la germination est la formation d’un petit 
tubercule (fig. 199, D, E); toutes les cellules de l'embryon se 
cloisonnent. Le thalle produit se fixe au sol par des poils isolés 
ou en touffe. Un peu plus tard, il forme à son extrémité libre un 
petit point de végétation. Celui-ci est bientôt presque compléte- 
ment employé pour donner une première feuille. Ce qui en reste, 
à la base de celle-ci, donnera le point de végétation définitif. Son 
sommet est très concave, ce qui tient au très grand volume 
relatif des feuilles qu’il donne et à la brièveté relative des 
segments de la tige qu’il produit. 

La première feuille un peu développée, on voit partir de sa 
base une première racine nettement définie. Les feuilles suivantes 
se montrent après un temps plus ou moins long, variant d’une 
espèce à l’autre. Les Cypripedium présentent une feuille au bout 
de six mois(1), les Dendrobium au bout de sept mois, les Cattleya 


(1) Les Cypripedium, après 15 à 18 mois de végétation, ont à peine o®,015 
de diamètre. à 


à neuf mois. Souvent, plus d’un an s'écoule entre le moment du 
semis et celui où la jeune plante apparaît. Celle-ci reste naine, 
presque imperceptible pendant plusieurs années. 

Certaines Orchidées terrestres mettent un temps moins long 
à parcourir le cycle de leur évolution. Le Disa X Veitchi, fleurit 
vingt et un mois après l’ensemencement des graines. Les hybri- 
des de nos Orchidées indigènes fleurissent dès la seconde année. 
Il en est de même de certains Paphiopedium : le P. X pulchellum, 
hybride des P. grande et P. Sedeni a germé et s’est développé si 
rapidement que deux ans après le semis il était en fleur. 

A l’exception des Dendrobium, des Phajus, des Calanthe et 
des Cypripedinées, il est rare de voir fleurir les Orchidées de 


Fig. 199. — D Plantule de l'Epidendrum ciliare L. (3/1); € la même fortement 
grossie (20/1); F, G plantule de Bletilla hyacinthina Rous. f.; x semis de Cattleya 
agé de 5 ans; J plantule d’une Orchidée monopodiale, le Sarcanthus rostratus 
(LoL. 30/1). 

semis avant la cinquième année. Les Laelia et les Cattleya ont 

une croissance encore plus lente. Ce n’est guère qu'après dix 

ou douze ans qu’un semeur heureux peut espérer voir fleurir 

ses Laeliocattleya(:). 

La multiplication des Orchidées par voie de semis dépend de 
conditions multiples : la qualité des graines, la nature du milieu 
dans lequel on les place, la régularité des conditions de chaleur 
et de lumière de ce milieu. 


La période la plus critique pour les semis d'Orchidées est 


(x) Le Laeliocattleya caloglossa a donné sa première fleur vers l’âge de 
20 ans! 


— 233 — 
celle comprise entre le moment de la germination et celui de la 
formation des premières racines. Pendant cette période (qui 
dure plusieurs mois), il suffit d’un moment pour anéantir le semis. 
Les moindres variations de chaleur, d'humidité, de lumière même 
sont des causes de mortalité. C'est assez dire que les semis récla- 
ment des soins incessants et une patience minutieuse toujours en 
éveil. 

Les graines germent indifféremment sur la mousse, sur des 
feuilles mortes ou vivantes, sur des tessons de poterie, en un 
mot sur tout corps susceptible de retenir l'humidité. Les semis 
faits sur du sphagnum vivant donnent toutefois les meilleurs 
résultats. Les jeunes plantes trouvent dans ce milieu les éléments 
nécessaires à leur développement jusqu’au moment de l’émission 
des racines, époque à laquelle on les repique dans des vases de 
très petite dimension remplis d'un compost. 

En résumé, la réussite des semis d’Orchidées dépend : 1° de 
la qualité des graines; 2° du milieu dans lequel on opère; 
3° de la régularité des conditions de ce milieu. 


CEA ORCTIE 


HYBRIDATION DES ORCHIDÉES. 


HYBRIDATION. — Nous avons déjà insisté sur ce fait : la 
fécondation croisée est la règle dans la famille des Orchidées. 
L'expérience a prouvé que, dans de nombreuses espèces, les 
fleurs ne fructifiaient pas sous l’action de leur pollen, et, d'autre 
part, qu'elles pouvaient être fertilisées par le pollen d'espèces 
parfois très différentes, quelquefois même appartenant à d’autres 
genres. 

Nos Orchidées indigènes nous offrent des hybrides provenant 
soit de la fécondation des divers Orchis entre eux, soit de la 
fécondation des Orchis par les Aceras, les Habenaria, etc. 
Quand il s’agit d'Orchidées tropicales, tous les orchidophiles 
savent combien il est difficile d'apprécier ces innombrables 
variétés de Laelia, de Cattleya, d’Odontoglossum, dont l’appa- 
rition est annoncée chaque mois dans les réclames des journaux 
horticoles. La nature est un vaste atelier où s'élaborent chaque 
jour de nouvelles Orchidées hybrides(t), dont la parenté 


(1) Les hybrides naturels d’'Orchidées sont en Europe moins rares qu’on ne 
se l’imagine. Nous citerons l’'Ophrys devenensis Rchb. f. de la Suisse, produit des 
Ophrys myodes X arachnites; V'Ophrys hybrida Pok. (O0. myodes X aranifera), 
aux formes multiples (O0. apicula Schm. O. Reichenbachiana M. Schulze), de la 
Suisse et de la Thuringe; l’Ophrys Todaroana Macch., de la Sardaigne, prove- 
nant des O. aranifera X atrata, et l'Ophrys epeirophora Peterm., procréé par 
les ©. aranifera X apifera en Bavière. Les botanistes ont également signalé un 
grand nombre d’hybrides naturels d'Orchis. Voici les principaux: Orchis 


est souvent difficile à établir. M. Boxall n’a-t-il pas retrouvé à 
l’état spontané, dans la Birmanie une forme du Calanthe X Veit- 
chi, obtenue en 1859 par M. Douciny à l’établissement Veitch en 
fécondant le Limatodes rosea par le pollen du Preptanthe vestita? 
A la suite de ces hybridations naturelles, les variations se 
succèdent, nombreuses et fréquentes, au point que les espèces 
types, fort difficiles à découvrir, perdent, à travers ces transfor- 
mations incessantes et variées, leur stabilité première et que 
leurs descendants donnent parfois, sur le même pied, des fleurs 
sans cesse différentes, comme on le remarque chez les Paphio- 
bedium X Danthieri the Albino, et P. insigne Sanderae. 

Le hasard, ce merveilleux magicien, opère quelquefois dans 
les serres comme dans la forêt vierge. Ainsi naissent dans les 
serres des hybrides naturels, tels que l'Oncidium deltoglossum 
(O. leucopterum X O. odoratum), de l’établissement Veitch; l’On- 
cidium excellens (O. Pescatoret X O. tripudians), de l’établissement 


Gennari Rchb. (O0. Morio X papilionacea), Italie, Grèce, Istrie. O. Bornemani 
Aschs. (0. papilionacea X longicornu), Sardaigne. O. Perretii Richt. (O0. pur- 
purea X morio), France. O. alata Henry (O0. Morio X laxiflora), France, Suisse. 
O. Dietrichiana Bogenh. (O0. ustulata X variegata), Allemagne, Autriche. 
O. Canuti Richt. (O0. éridentata X militaris), France mérid. O. Beyrichii 
A. Kern. (O0. Simia X militaris), France. O. Weddelli Richt. (O0. Simia X pur- 
purea), France. O. spuria Rchb. (Aceras anthrophora X O. militaris), Suisse, 
Allemagne. O. Wilmsii Richt. (O0. purpurea X mascula), Westphalie. O. Valle- 
siaca Spren. (O. globosa X Gymnadenia conopsea), Valais, Suisse. O. Timbali 
Velen. (O0. laxiflora X coriophora), France. O. Lorenziana Brügg. (O0. mascula 
X pallens), Autriche. O. Langei Richt. (O. mascula X laxiflora), Espagne. 
O. speciosissima Wettst. et Sennh. (O. mascula X sambucina), Autriche. 
O. pentecostalis Wettst. et Sennh. (O. mascula X maculata), Autriche. O. Uech- 
tritziana Hausskn. (0. incarnata X palustris), Allemagne, Autriche. O. Dufftii 
Hausskn. (0. incarnata X angustifolia), Thuringe. O. Aschersoniana Hausskn. 
(O. incarnata X latifolia), Suisse, Thuringe. O. ambigua Kern. (O. incarnata X 
#maculata), Transylvanie. O. Schulzei Richt. (O. angustifolia X maculata), 
Thuringe. O. monticola Richt. (O. latifolia X sambucina), Autriche. O. Braunii 
Hal. (O. latifolia X maculata), Autriche. O. Heinzeliana Rchb. f. (O. maculata 
X Gymnadenia conopsea), Autriche. O. Regeliana Brügg. (O0. maculata X Gym- 
nadenia odoratissima), Suisse, Autriche. O. Bruniana Brügg. (O0. maculata X 
Gymnadenia albida), Suisse. 

Dans les pays tropicaux, l’hybridation est si fréquente que certains types 
sont affolés. Il est bien difficile de déterminer la parenté d’hybrides naturels; 
tels que Phalaenopsis intermedia Lindl., qu’on croit provenir de P. Aphrodite X 
P. rosea; Phalaenopsis leucorhoda Rchb. f., de P. Aphrodite X P. Schilleriana; 
Phalaenopsis Veitchiana Rchb. f., de P. Schilleriana X P. rosea. 


— 236 — 


Low; et l'Oncidium Mariottianum (O. Halli X O. crispum), de 
M. E. Mariott(1). 

Les Orchidées hybrides naturelles ou artificielles ne se comp- 
tent plus : les Aerides, les Anguloa, les Anœctochilus, les 
Calanthe, les Cattleya, les Dendrobium, les Disa, les Epiden- 
drum, les Chysis, les Cymbidium, les Lycaste, les Laelia, les 
Masdevallia, les Phajus, les Phalaenopsis, les Sophronitis, les 
Stanhopea, les Thunia, les Colax, les Zygopetalum et surtout 
les Cypripédinées, ont fourni à nos cultures de nombreuxhybrides. 


HISTORIQUE. — Le premier hybride artificiel entre Orchi- 
dées de serre, a été obtenu par Dominy à Exeter; il fleurit en 
octobre 1856. C’est le Calanthe X Dominyi Lindi. Il provenait de 
la fécondation du C. Masuca Lindl. par le C. furcata Bat. A cet 
heureux et habile semeur, nous devons également le premier 
Cypripède hybride : Paphiopedium Harrisianum, provenant des 
Paphiopedium villosum et barbatum ; il fut obtenu en 1869(2). 

Les premiers succès de Dominy appelèrent l'attention des 
orchidophiles sur la fécondation de ces plantes. À son exemple, 
ils introduisent une tige de bois taillée en pointe très fine; dans 
la partie de la fleur où se cachent les nectaires. Le rostellum, 
en forme de poche, y fait une saillie. L'introduction d'un corps 
étranger rompt cette membrane, et un ou deux rétinacles visqueux 
viennent en contact avec la pointe intro- 
duite. En retirant le crayon, une ou deux 
pollinies y adhèrent. Grâce au pouvoir de 


Fig. 200. — Crayon avec 
pollinie attachée après 


son mouvement de con- ]a pollinie décrit un arc de cercle de 90° 
traction. - : . 
vers la pointe de la tige de bois (fig. 200). 
En transportant la pollinie dans l’androcée d’une autre Orchidée, 
celle-ci vient frapper la surface du stigmate qu’elle féconde. 


contraction du disque sur lequel elle repose, 


(1) Souvent certains semeurs assignent à leurs hybrides des parentés dou- 
teuses : un hasard malencontreux, une erreur d’étiquettes ne permettant pas 
d’affirmer avec exactitude quelles plantes ont fourni le pollen : tel est le cas de 
l'Oncidium facetum, bel hybride aux fleurs jaune clair maculé de grandes taches 
couleur cannelle, et qui semble provenir de l'Oncidium Halli fécondé par 
l’'Oncidium luteopurpureum ou l'Oncidium tripudians. 

(2) Ceux qui voudront étudier d’une manière complète l’histoire de 
l’hybridation des Orchidées, trouveront tous les éléments de cette étude 
dans l’excellente Orchid Review. 


a — 

En opérant de cette façon, avec une habileté et un soin extré- 
mes, MM. Seden, Canham, Bart, Marshall, Bowring, Cookson, 
Cross, Drewett, Harriss, Fraser, Latham, Lawrence, Swan, 
Robert Warner, etc. en Angleterre, F. Horn en Autriche, 
Sallier, Bleu, Bauer en France, Van Houtte, Vervaet, Linden, 
Vuylsteke, Jules Hye, etc. en Belgique, ont obtenu un nombre 
considérable d’hybrides horticoles. 

Aujourd'hui, ce n'est plus seulement dans les serres qu’opèrent 
nos hybridateurs : au pays du soleil, dans la patrie des Orchidées, 
des hybrides sont obtenus artificiellement, et nous manquerions 
de courtoisie en négligeant de citer Miss Joaquim, de Singapore, 
qui a obtenu le premier hybride tropical de Vanda; il porte son 
nom: cet hommage lui était bien dü. 

Parfois les hybrides se rapprochent plus d’un de leurs parents, 
sans qu’on ait pu déterminer la cause efficiente de l’influence pré- 
pondérante de l’un de ceux-ci; d’autres fois, ils sont exactement 
intermédiaires entre les deux parents. Tel est le cas du premier 
Dendrobium hybride obtenu en 1879 par Seden, le D. melano- 
Phtalmum qui rappelle les traits principaux des D. crassinode et 
D. Wardianum, ses parents. 

Souvent les hybrides se distinguent de leurs parents par une 
croissance plus rapide et par une floraison plus tardive ou plus 
abondante. Cette remarque fort judicieuse, faite par M. Camus(1) 
au sujet des hybrides naturels récoltés en France, est corroborée 
par les observations recueillies dans les serres. L’Aerides Domi- 
nyanum se distingue notamment par ces qualités des À. Fieldingir 
et À. mulhflorum. Les hybrides du second degré ou métis croisés 
avec leurs parents, donnent des produits se rapprochant d’autant 
plus de ces parents que l’action de ces derniers a eu lieu un plus 
grand nombre de fois dans leur origine. 


HYBRIDES SPÉCIFIQUES. — Le croisement spécifique ne donne 
pas toujours des variétés bien distinctes : il produit le plus 
souvent des sous-variétés d’un type ayant quelques caractères 
plus ou moins marqués. C'est ainsi que dans un semis du 
très délicat Paphiopedium tesselatum, M. Seden trouva une plante 


(x) G. Cauus, Monographie des Orchidées de France. Paris, 1894. 


— 238 — 


robuste, le Paphiopedium porphyreum, peu différente du type dont 
elle a les splendides fleurs colorées du plus riche brun pourpre, 
mais se distinguant néanmoins de celui-ci par le dessin plus 
net et plus délicat de ses feuilles. 

Les hybrides obtenus ne sont pas toujours inédits : les orchi- 
dophiles se souviendront de l'apparition simultanée dans les 
collections de MM. Measures, Drevett et Vanner du Paphiope- 
dium X polystigmaticum, hybride provenant de la fécondation des 
P. venustum et P. Shicerianum. 

Dans un intéressant travail publié en 1892, M. Ernest 
Bergman, qui cultive avec tant de succès les Orchidées les plus 
difficiles au château de Ferrière, constatait que sur 326 semis, 
202 appartenaient aux Cypripédinées. Cette proportion n’a fait 
que s’accroître, de sorte qu’en décembre 1893, nous relevons sur 
38 semis, 24 Cypripèdes! dont quelques-uns sont des hybrides . 
au second et au troisième degré. Afin de mettre sous les yeux de 
nos lecteurs quelques types de ces générations successives, nous 
avons tenu à donner la figure des P. Harrisianum (fig. 205), 
de ses deux parents P. villosum (fig. 74) et P. barbatum (fig. 12). 
Nous avons figuré également le P. oenanthum superbum (fig. 251) 
obtenu par le mariage du P. Harrisianum et du P. insigne 
(fig. 260). 


M£rTis. — Les Orchidées hybrides ne sont pas fatalement 
stériles. Au contraire, le plus grand nombre de variétés ont des 
ovaires normalement développés et produisent un pollen bien 
conformé. De là viennent ces hybrides du second degré ou métis, 
que nous rencontrons aujourd’hui en si grand nombre dans les 
collections. En se fécondant mutuellement, ils constituent ce que 
les jardiniers appellent des races. Les hybrides des Cypripédinées 
nous présentent ainsi des groupes déjà nombreux se rapportant 
à certains types tels que le groupe des Harrisianum (Gi), des 


(x) P. apiculatum, concinnum, Charles Canham, Germinyanum, Godseffianum, 
Harvrisianum, a) atropurpureum, b) Brayi, c) Dauthieri, d) hybridum, e) pur- 
purascens, f) superbum, g) vivicans; P. Lathamianum, Measuresianum, P. M., 
Amesianum, Ms Charles Canham, vernixium, Williamsianum, Winnia- 
num, etc. 


Œnanthum\), des Ashburtoniæ (2), des Superciliare(3), des Crossia- 


num (4), des Marshallianum (5), des Leeanum (6), des Selligerum(r), 
des Sedeni (8), etc., etc. 


HYBRIDES BIGÉNÉRIQUES. — Il est, on le sait, possible de 
féconder l’une par l’autre des espèces appartenant à deux 
genres différents, créant ainsi ce qu’on a parfaitement appelé 
des hybrides bigénériques, lorsque le produit issu de ce croise- 
ment ne reproduit pas les caractères essentiels de l’un ou de 
l’autre de ses parents. La fécondation croisée demeure sans 
résultat entre les Paphiopedium et les Cypripedium de Pfitzer, 
quoique la grande variabilité des Paphiopedium atteste la facilité 
du croisement à l'intérieur de ce genre. 

La liste des Orchidées bigénériques est déjà longue : les 
Phajus et les Calanthe, les Laelia et les (Cattleya, les 
Sophronitis et les Cattleya, les Zygopetalum et les Colax, les 
Anoectochilus, les Macodes, les Dossinia et les Haemaria ont 
produit des hybrides auxquels le savant orchidologue Rolfe 
a donné les noms de Phajocalanthe, de Laeliocattleya, de Sophro- 
cattleya, de Zygocolax, d'Anoectomaria, de Macomaria et de Dossi- 
nimaria. Parfois les caractères d'un des deux genres persistent 
avec une netteté suffisante pour assurer à l’hybride le droit de 
continuer à figurer dans le genre maternel ou paternel. Ainsi un 


(x) P. œnanthum a) Acis, b) El-ktra, c) Galatea, d) Fosephine Folibois, 
e) Orestes, f) superbum, g) Thibautianum, etc. 

(2) P. Arthurianum, Ashburtoniae, à) calospilum, b) expansum, c) Majus, 
d) superbum, P. Laforcadei, var. Barteti, P. nitens, P. Sallieri. 

(3) P. superciliare: P. almum, delicatulum, Euryale, var. Vervactianum, 
gemmiferum, To, javanico X superbiens, marmorophyllum, orphanum. pleisto- 
chlorum, superciliare, Swanianum, etc. 

(4) P. Crossianum : P. auroreum, caligare, calobhyllum, Carrierei, chloroneu- 
rum, à) discolor, b) Meirax, c) melanophthalmum, d) politum; P. Crossianum 
var. amandum, Fiichianum, pavoninum, plunerum, Thetis. 

(5) P. Marshallianum : P. Aphrodite, Mad. Van Houtte, microchilum, Taut- 
zianum, tesselatum-porphyreum. 

(6) P. Lecanum var. superbum, Hornianum, polystigmaticum, radiosum, r. 
var. variopictum, Savageanum, Seegerianum. 

(7) P. calanthum, euryandrum, macropterum, Morganiae, Peetersianum, 
bycnopterum, p. var. porphyrospilum, selligerum. 

(8) P. albo-purpureum, Ainsworthii, À. var., calurum, cardinale, leucorhodum, 
Saundersianum, Schroederias, Sedenii a) albanense, b) candidulum, c) porbhy- 
reum et P. stenophyllum. 


Phajus fécondé avec le pollen d'un Calanthe, a donné un Phajus. 
Un Anoectochilus fécondé par un Goodyera a donné un Anoec- 
tochilus, tandis que le croisement en sens contraire donnait un 
Goodyera (Rolfe). 

Quand les hybrides ont été obtenus par fécondation artificielle, 
il convient pour leur nomenclature de suivre autant que possible 
la loi de Schiede. 

Les quatre règles suivantes ont été adoptées par la Royal 
horticultural Society de Londres, pour la nomenclature des 
hybrides : 

I. Pour les genres, espèces, variétés bien tranchées et hybrides 
naturels, se conformer aux Lois de la nomenclature botanique, 
telles qu’elles ont été formulées par le Congrès botanique inter- 
national de Paris en 1867. La personne qui exposera, pour la 
première fois, une plante désignée par un nom latin, sera invitée 
à faire connaître le nom du botaniste qui en aura fait la 
description. 

II. Hybrides artificiels entre genres : nom générique latin 
formé de la combinaison des noms des parents, et nom spéci- 
fique, également latin, séparé du premier par le signe d’hybri- 
dieux 

III. Hybrides artificiels entre espèces : nom latin avec addition 
du mot hybridus ou du signe X. 

IV. Hybrides artificiels entre variétés : nom tiré de la langue 
indigène du pays où l’hybride a été produit. 

Cette dernière règle est malheureusement trop souvent perdue 
de vue. Dans le plus grand nombre des cas, on nomme les 
variétés hybrides en ajoutant un qualificatif latin au nom du 
genre. Ces noms de variétés, semblables à ceux des espèces, 
entraînent à de fâcheuses confusions. Mieux vaudrait toujours 
remplacer ces qualificatifs latins — souvent fort bizarres — 
par des noms français, anglais, allemands ainsi qu’on le fait 
pour d’autres plantes de collection : Rosiers, Fuchsia, Pélar- 
gonium, etc. 


PL. XVI. 


RIPEDIUM ARGUS 


PAPHIOPEDIUM ARGUS. 


CHAPITRE, XII. 


ORCHIDÉES FOSSILES. 


DIFFICULTÉ DE LEUR ÉTUDE. — De toutes les questions que la 
paléontologie aura à résoudre, il n’en est guère de plus difficile 
que celles ayant trait à l'existence des Orchidées dans les âges 
préhistoriques. Les Orchidées ne sont connues à l'état fossile 
que dans les terrains les plus récents. Elles apparaissent dans 
les temps éocènes. Ce sont des dernières venues dans le monde 
végétal. Ce résultat n'est point fait pour nous surprendre, car les 
Orchidées sont les plus élevées des Monocotylédones. Leur 
apparition doit donc être postérieure à celle des plantes liliacéen- 
nes. D’autre part, les Orchidées sont une des familles actuelle- 
. ment dominantes ainsi qu’en témoigne la prodigieuse variété de 
leurs formes génériques. Ces plantes atteignent en ce moment 
l'apogée de leur développement; il est donc très probable 
qu’elles remontent moins haut dans le passé que les autres 
Monocotylédones plus simples. 

La structure herbacée des Orchidées se prête peu à la fossilisa- 
tion. Cette raison jadis acceptable a bien peu de valeur aujour- 
d’hui quand des observateurs comme Bertrand et Renault nous 
montrent le protoplasme et les noyaux des cellules chez les 
plantes houillères les plus variées; quand ces mêmes savants 
nous font connaître, dans leurs détails les plus intimes, la struc- 
ture et la biologie des délicates Volocinées qui flottaient sur les 
eaux brunes des lacs où se formaient nos charbons à gaz). La 


(1) C. Ec. BERTRAND. Conférences sur les Charbons de terre, 1. — Les Bogheads 
à Algues. — Bulletin de la Société belge de géologie et d'hydrologie, 30 mai 1893. 


16 


délicatesse extrême des fleurs de nos belles Orchidées n’est donc 
pas un obstacle à leur conservation. Sans nul doute, les paléo- 
botanistes de l'avenir nous montreront les détails de la 
fécondation des Orchidées primitives. En attendant, nous ne 
possédons encore que des empreintes de feuilles et de pseudo- 
bulbes. Sur de tels éléments, l’attribution des restes végétaux 
aux Orchidées laisse toujours subsister beaucoup d’incertitude(1). 


FLORE ORCHIDÉENNE FOSSILE. — M. Massalongo a décrit (2) 
sous les noms de Protorchis et de Palaeorchis des plantes fossiles, 
pseudo-bulbes garnis de feuilles qu’il a rencontrés dans les ter- 
rains éocènes du Monte Bolca. Ces restes semblent appartenir 
à des Orchidées. A la vérité, cette attribution a été contestée, 
pour les Palueorchis tout au moins, les spécimens plus com- 
plets trouvés aux environs de Vérone ayant été considérés par 
MM. Meschinelli et Squinabol comme des Butomacées (3). Si les 
Protorchis représentent les Orchidées dans la flore éocène, il 
est à peu près certain que la famille à été mieux représentée 
pendant le miocène et le pliocène seuls. Sans nul doute, les 
investigations minutieuses faites dans les terrains de l’Amérique 
et de l’Inde, ces centres actuels de l’Orchidée, apporteront à 
la science de précieux et irrécusables témoignages sur la génèse 
de nos fleurs les plus belles et les plus admirées. 


(1) Traité de paléontologie par K. ZiTTEL, partie II. Paléophytologie, par feu le 
professeur W. PH. SCHIMPER, terminée par A.SCHENK, traduite par Ch. Barrois. 
Paris, 1891. 

(2) MassALoNGo. Phalacophyta variora, formationis tertiariae Agri Veneti. 
Venezia, 1858, p. 23. 

(3) Flora tertiara italica, auct. À. MESCHINELLI et X. SQUINABOL. Patavii 


1892, PP. 194-105. 


CHAPIFRE XIV. 


CLASSIFICATION DES ORCHIDÉES. 


DIFFICULTÉS DE CETTE CLASSIFICATION. — La classification 
naturelle des Orchidées n’est connue que dans ses grandes 
lignes. La plupart des tribus qui ont été établies sont mani- 
festement très naturelles et correspondent bien à des rameaux ou 
phylums très réels de la généalogie de ces êtres; mais on n’est pas 
encore parvenu à reconnaître les rapports de ces phylums entre 
eux. De là, les hésitations et les divergences que nous consta- 
tons dans les travaux les plus autorisés. Cette question est du 
reste une des plus difficiles de la botanique systématique. Le 
groupe orchidéen est d’abord extrèmement nombreux: 408 genres 
et 8000 espèces! Comme étendue, il n’est dépassé que par les 
Composées, 836 genres et 10,200 espèces. Si les Légumineuses 
ont un nombre de genres supérieur (434), elles n'ont que 7000 
espèces. L'ensemble des Orchidées est extrêmement homogène 
et très différencié dans un certain sens; si bien que tous les 
genres, très proches parents, présentent les mêmes caractères 
essentiels. Ceux-là employés, il ne reste plus que des caractères 
secondaires dont l’ordre d'apparition dans le temps n’est pas 
du tout évident. Il y a là une difficulté extrêmement sérieuse, 
qui ne pourra être vaincue que par une étude critique approfon- 
die des caractères génériques et spécifiques, faite en vue de 
reconnaître leur valeur phylétique; encore faudrait-il pouvoir 
soumettre la gradation établie sur l’étude des Orchidées vivantes, 
au contrôle de la paléontologie. 

Les caractères employés pour définir les subdivisions des 
Orchidées n’ont été déterminés que par leur degré relatif de 


a 
généralité, et jamais par la valeur de l’indication phylétique qu’ils 
fournissent. Nous savons bien que cette indication phylétique est 
très difficile à apprécier; mais il faut tenter de l’obtenir, sous 
peine de rester indéfiniment dans des systèmes artificiels, plus 
ou moins habilement disposés en vue de la détermination des 
genres et des espèces, mais qui ne nous représentent nulle- 
ment le mode de constitution du groupe orchidéen. 


CLASSIFICATIONS ANCIENNES. — Swartz distinguait, en 1800, 
25 genres d'Orchidées, dont onze étaient établis par lui-même; il 
les répartissait en trois sections d’après la position des deux 
loges de l’anthère relativement au filet. Willdenow (1805) recon- 
naissait 27 genres, qu’il partageait en deux sections d’après l'état 
de l’éperon. Robert Brown (1813) adoptait le caractère employé 
par Swartz; il admettait 44 genres et les répartissait en cinq 
sections (1). L. C. Richard (1817), s'appuyant sur l’état des 
masses polliniques, ne distinguait, dans les Orchidées d'Europe, 


que 22 genres. 


CLASSIFICATIONS DE LINDLEY. — Dans ses magnifiques 
études sur les Orchidées publiées de 1830 à 1840 sous le titre : 
Genera and Species of Orchidaceous Plants, Lindley établit, parmi 
les Orchidées, sept tribus qu’il définit comme suit, par le 
nombre des étamines, l'état des masses polliniques, la direction 


de l’anthère et la présence des caudicules. 


Pas de caudicule, ni de rétinacle 


séparable: tuto 012: Malais 
Masses ; re 
ü llin: Une caudicule distincte, pas de 
al 
£ a a rétinacle: . . . . . . . Il. Épidendrées. 
& rue Une caudicule distincte, unie à 
= un rétinacle décidu : . . . III. Vandées. 
[] 
a 
Masses polliniques : 
à 5 2 Anthère terminale, dressée: , . IV. Ophrydées. 
= pulvérulentes, 3 : ; - 
Anthère terminale, operculaire; . V. Aréthusées. 
granuleuses ou : > 
; Anthère dorsale: . . . , . VI. Néottiées. 
sectiles. 
Denx'añthères 5040 UL, 2 LLNES TORTUE NE LE MES CTATENNREES 


L'œuvre de Lindley marque un progrès énorme sur celle de 
ses devanciers. De 1852 à 1859, dans ses Folia Orchidacea, le 


(1) Hortus Kewensis, 2e édit., 1813. 


—_ 45 


grand orchidologue anglais compléta ses recherches antérieures, 
tantôt sur un point, tantôt sur un autre, accumulant ainsi une 
masse énorme de matériaux qui ont servi de point de départ aux 
travaux de Reichenbach et aux belles recherches de Pfitzer. 

Dès 1840, Lindley(1) avait reconnu et mis en relief les 
caractères différentiels des deux grandes familles orchidéennes : 
les Cypripédinées et les Orchidées monandres. Il est regrettable que, 
préoccupé de définir ces deux groupes par une seule phrase, il 
n’y ait pas ajouté les caractéristiques fournies par le stigmate. 
Lindley avait également compris l'importance des caractères 
fournis par les pollinies et par la position de l’anthère des 
Orchidées monandres. 

Reichenbach mit bien en évidence, dans les Annales de 
Walpers (1855), l'opposition des Ophrydées ou Basitones et 
des Acrotones. Vers la même époque, Lindley, puis Reichen- 
bach modifiant quelque peu la classification dont il avait 
antérieurement jeté les bases (2), divisent les Acrotones comme 
suit : 

ACROTONES : 
I. NÉOTTIACÉES. 
Anthère persistante, se desséchant sur place. Pollen ordinairement 
granuleux, 
II. EUOPERCULATÉES. 
Anthère caduque. 
1. Aréthusées. 
Pollinies molles, granuleuses. 
2. Vandées. 
Pollinies cireuses, pourvues de stipes(3) et de glandules (4). 
3. Épidendrées. 
Pollinies cireuses, avec caudicules sans stylets. 
4. Malaxidées. 
Pollinies cireuses, sans appendices. 


SYSTÈME DE BENTHAM. — Dans le Genera Plantarum de 


(1) Lindley excluait les Apostasiées de l’ensemble orchidéen. Nous 
sommes de l’avis de Lindley, contrairement à Bentham et Hooker, contraire- 
ment aussi à Pfitzer. Pour nous, les Apostasia sont une amorce du rameau 
orchidéen, mais elles ne possèdent pas encore les caractères particuliers de 
ce rameau. 

(2) Cf. son ouvrage de 1852: De pollinis Orchidearum genesi, etc. 

(3) Séipe est ici synonyme de sfylet du pollinarium. 

(4) Glandule est synonyme de masse adhésive, 


— 246 — 


J. D. Hooker et Bentham, les Malaxidées sont réunies aux 
Épidendrées d’une part, d'autre part les Néottiées sont réunies 
aux Aréthusées. Il n’y a guère de coordination dans les caractères 
des tribus. Celles-ci sont placées les unes à la suite des autres 
et caractérisées trop vaguement (1). Il est difficile, d’après les 
caractères donnés, de trouver une différence précise entre les 
Néottiées et les Ophrydées. Ce défaut a vivement frappé notre 
éminent botaniste belge M. Cogniaux qui, dans le Journal des 
Orchidées (2), proposa de compléter l’arrangement adopté par 
l’illustre orchidographe anglais M. Bentham, en introduisant la 
considération de la basitonie et de l’acrotonie pour séparer ces 


deux séries. 


E) 4) Pollinies libres: rétinacle nul . . I. Épidendrées. 
= | Pollinies cireuses. | ro attachées au rostellum 

ë | par un rétinacle. . . . . . Il. Vandées. 

£ | Pollinies ordinairement libres, à 

£ appendices nuls ou développés 

© Pollinies sectiles vers la pointe de l'anthère . . III. Néottiées. 

8 ou granuleuses. Pollinies prolongées vers la base 

2 | de l'anthère et attachées au 

2 ; rostellum par un rétinacle . . IV. Ophrydées. 
CE Pollen granuleux . . . . . V. Cypripédiées 


fertiles. \ 


Dans ces cinq tribus, Bentham rangeait 334 genres et 
4,990 espèces, se répartissant comme suit : Épidendrées 88 gen- 
res, 2,000 espèces; Vandées 129 genres, 1,400 espèces; Néot- 
tiées 81 genres, 770 espèces; Ophrydées 32 genres, 760 espèces; 
Cypripédiées 4 genres, 60 espèces. 

SYSTÈME DE PFITZER. — Le dernier grand ouvrage d’ensemble 
paru sur les Orchidées est la belle monographie que le célèbre 
botaniste allemand Pfitzer a publié dans les Pflanzenfamilien de 
Engler et Prantl(3). Dans cette œuvre magistrale, résumant à la 
fois les recherches personnelles de Pftzer et celles de ses prédé- 
cesseurs, nous trouvons tout ce que l’on sait aujourd’hui sur les 


(1) Genera plantarum, t. III, p. 460-636. Cf. Notes on Orchideae, 1881. 


(2) Yournal des Orchidées, t. IT, p. 46. 
(3) EnGzer et PRAnTL. Die Naturliche Pflanzenfamilien. Leipzig; Engel- 


mann, 1888. 


Orchidées. Nous avons puisé à pleines mains dans cet ouvrage 
qui nous à fourni de nombreux faits nettement exposés. Nous 
nous estimerons heureux si nous avons pu, ce qui était notre vif 
désir, mettre à la portée des orchidophiles et des horticulteurs, la 
haute science et les indications de toute nature données par le 
savant professeur de Heidelberg. 

M. Pfitzer a naturellement donné dans son livre une classifi- 
cation des Orchidées. Nous en résumons les grandes lignes dans 
un premier tableau synoptique. Bien qu’à première vue, cette clas- 
sification semble s’écarter considérablement de celle admise par 
Bentham et Hooker, un examen plus attentif montre que les grou- 
pes principaux comprennent presque toujours les mêmes genres. 

M. Pfitzer laisse les Apostasiées dans les Orchidées : nous avons 
dit pourquoi nous ne pouvons partager son opinion sur ce point. 

Le savant orchidologue allemand caractérise de suite les 
Cypripédinées et les Monandrées : celles-ci sont à leur tour 
divisées en Basitones et en Acrotones. Les tribus établies dans 
les Basitones : Sérapiadées-Gymnadéniées, Habénariées, Satyriées 
et Coryciées, sont très naturelles, définies par d’excellents 
caractères : la différenciation des bursicules chez les premières, 
l'appareil stigmatique chez les secondes, le renversement de 
l’anthère et la position terminale du stigmate chez les troisièmes, 
enfin l'insertion du labelle chez les quatrièmes. On voit là un 
phyllum végétal qui a émis un grand rameau dans une direction 
principale : les Sérapiadées-Gymnadéniées. Incidemment ce 
rameau principal a fourni des rameaux latéraux par de petites 
spécialisations particulières portant : ici, sur le stigmate : Habé- 
nariées; là, sur la position de l’anthère et le stigmate terminal : 
Satyriées ; enfin, sur les rapports du labelle : Coryciées. Ces subdi- 
visions des Basitones nous paraissent donc très heureuses, con- 
formes à la filiation probable de cette série végétale. 

Quant aux Acrotones, la grande difficulté de la classification 
des Orchidées, M. Pfitzer fait intervenir, comme caractères domi- 
nants, le rôle que l’inflorescence prend ou ne prend pas à la for- 
mation du sympode, ainsi que la préfoliation des feuilles dans le 
bourgeon. Nous avons exprimé notre sentiment sur ce point(1). 


(1) Première partie. Chapitre V, $ IX, page 82. 


= AOL 


Comme on le voit par le tableau synoptique de la classifi- 
cation des genres, M. Pftzer attache une grande valeur aux 
caractères tirés de l'appareil végétatif, en les plaçant ainsi 
au-dessus des caractères des tribus. Par là, peut-être, cette 
classification devra-t-elle être modifiée quelque jour. Mais, ces 
réserves faites, nous nous empressons de constater que dans le 
groupement des tribus des Acrotones, comme dans la subdivision 
des tribus en genres, M. Pfitzer s'est attaché, et souvent avec 


succès, à établir des sériations naturelles, comme celles que 
nous signalions plus haut pour les Ophrydées. 


TABLEAU SYNOPTIQUE DE LA CLASSIFICATION DE PFITZER. 


Il. ORCHIDÉES DIANDRES . . . . . . . A 


II. ORCHIDÉES MONANDRES. 


») ACROTONES, 


a) BASITONES. 


ACRANTHES. . . 


{ 


{ Feuille non 
| articulée. 


L . . . . . . . à 
l 
| 
| 


f PREFOLIATION 
{ 


CONVOLUTIVE. | 
Feuille arti- | 
| \ culée. | 


| PRÉFOLIATION DUPLICATIVE . 


Homoblastées . 


| PRÉFOLIATION 
CONVOLUTIVE. 


Hétéroblastées \ 


PLEURANTHES. . 


Sympodiales 


PRÉFOLIATION | 
| DUPLICATIVE. | 


/ 
! 


\ Monopodiales ) 


+ 


© LT 5 


30. 
31. 


. Apostasiinées (genres 1-2). 
. Cypripédinées (g. 3-5). 


. Ophrydinées (g. 6-50). 


(5 sous-tribus). 


. Néottiinées (g. 51-140). 


(13 sous-tribus). 


. Thuniinées (g. 141-144). 
. Collabinées (g. 145-148). 
. Cœlogyninées (g. 149-155). 


Liparidinées (g. 156bis-164). 


. Polystachinées (g. 165-171). 
. Podochilinées (g. 172-173). 


Glomérinées (g. 174-179). 


. Pleurothallidinées (180-189). 


. Laeliinées (g. 190-211). 


(2 sous-tribus). 
Sobralinées (g. 212-217). 
Phajinées (g. 218-232). 
Cyrtopodiinées (g. 233-241). 


. Catasétinées {g. 242-244). 


. Lycastinées (g. 245-250). 


Gcngorinées (g. 251-268). 


. Zygopétalinées (g. 269-274). 


.- Dendrobiinées (g. 275-280). 
2. Bulbophyllinées (g. 281-294). 


Thélasinées (g. 295-296). 
Cymbidiinées (g. 297-304). 


. Thécostélinées (g. 305). 


Sténiinées (g. 306). 


. Maxillariinées (g. 307-313). 


Oncidiinées (g. 314-357). 
(6 sous-tribus). 


. Huntleyiées (g. 358-366). 


Dichaeinées (g. 357-368). 
Sarcanthinées (g. 369-410). 
(2 sous-tribus). 


CHSPMRE XV. 


DES TRIBUS ET DES GENRES). 


I. TABLEAU POUR LA DÉTERMINATION DES TRIBUS DRESSÉ PAR 
PFITZER. 


A. Les deux étamines paires ou rarement toutes les pièces du verticille interne 
fertiles; l'étamine impaire du verticille externe rarement fertile, réduite à l'état 
de staminode: les trois lobes stigmatiques fertiles et à peu près la même 
forme . . . . . . . I. DIANDRÉES (Orchidées diandres). 
a) Enveloppes florales à symétrie presque rayonnée; colonne dressée, à surfaces 

stigmatiques terminales, étalées à peu près perpendiculairement à l'axe 
floral . . . . . . . . 1. Apostasiinées (Apostasiées des auteurs). 
b) Enveloppes florales symétriques par rapport à un plan; colonne infléchie vers 
le labelle, celui-ci ayant généralement la forme d’un sabot; surfaces stigma- 

tiques à peu près parallèles à l'axe de la fleur. 
2. Cypripédilinées (Cypripédiées ou Orchidées diandres). 

B. Les deux étamines paires ou toutes les étamines du verticille interne faisant 
défaut ou réduites à l'état de staminodes; très rarement fertiles; l’étamine 
impaire du verticille extérieur produisant seule le pollen; les lobes stigma- 
tiques pairs seuls fertiles, l'impair rudimentaire ou se transformant en rostel- 
lum . . . . II. MONANDRÉES (Orchidées monandres). 
a) Pollinies prolongées à la base des anthères par des filaments ou caudi- 

cules attachées aux masses adhésives gommeuses du rostellum; filet staminal 
court et large: anthère jamais caduque. BASITONES. 3. Ophrydinées. 
z) Colonne courte ou nulle; labelle inséré à sa base; anthère dressée; stig- 
mate en miroir. 
I. Masses adhésives contenues dans des bursicules appartenant au rostel- 


lum. Te … + + + * ‘à à. Sérapiadens 
II. Masses tee nues ou nhtonréss par des appendices prolongements 
de l’anthère :.". . ,  . A 207 3h Gymnadtie 


(1) Il est bien entendu qu'il ne s'agit ici que de genres botaniques. Malheureuse- 
ment nombre de jardiniers emploient le mot genre pour désigner de simples catégo- 
ries, plus ou moins caractérisées, de formes ou de variétés d'une même espèce, faisant 
ainsi du jordanisme sans le savoir, 


8) Colonne, labelle et anthère comme chez les précédents; lobes stigma- 

tiques libres. . . + + - *+ . . 3 c. Habénariées. 

7) Labelle inséré à la LS de une TRE courte ou allongée; anthère formant 
avec la colonne un angle considérable; presque toujours stigmate plan. 

3 d. Satyriées. 

ë) Labelle inséré sur la colonne même et possédant presque toujours des 

appendices. . . . ss ed € OI: 

b) Pollinies sans FR ou Fer. ceux-ci au sommet de l'anthère: 

filet staminal presque toujours grêle et mince; anthère se détachant en 


général facilement . . … . . . . . ACROTONES. 
2) Inflorescences terminales au PA de acnas des pousses réunies en 
sympode . . , ; N - . + .  Acranthes. 


I. Préfoliation re : A) ue et gaine hits non articulés ; 
anthère se flétrissant presque toujours sur place; masses polliniques 
rarement solides ou cireuses, presque toujours molles ou granuleuses. 

4. Néottiinées. 

1. Labelle assez semblable aux pétales et aux sépales: toutes ces pièces 

pétaloïdes; colonne courte, portant des ailes pétaloïdes entières 

ou découpées. . . . - 4 a. Thélymitreés. 

2. Labelle très différent . arte et 2 ee colonne à peine 

indiquée ou manquante: un staminode pétaloïde ou en forme d'auri- 

cule à sa droite et à sa gauche . . . . . . 4 b. Diuridées. 

3- Labelle presque toujours différent des pétales et des sépales, rare- 

ment à peu près semblable: colonne nettement dév eloppée, quoique 
parfois courte. 

* Anthère à sommet arrondi ou émoussé, dépassant en général 
beaucoup le rostellum ou s'appuyant sur celui-ci: pollinies 
ne s'unissant pas d'ordinaire avec le rostellum: pas d'échancrure 
nine dans le rostellum lors du départ de la masse adhésive. 

+ Labelle en forme de bouclier ou prolongé en un appendice par- 
ticulier qui part du point d'insertion de l'onglet sur la lame. 
4 c. Ptérostylidées. 

11 Labelle ne présentant point la forme de bouclier et dépourvu 

d'onglet, sans hypochilum et la plupart du temps, sans éperon:; 

sépales libres. 

À Labelle écarté de la colonne: anthère presque toujours dres- 
sée; feuilles basilaires; hampe écailleuse ou pourvue d'une 


seule feuille ordinaire. . . . . . 4 d. Caladéniées. 

AA Labelle écarté perpendiculairement à la colonne; anthère 
dresée; tige feuillée . . . . . . . 4 e. Chloreées. 

AAA Labelle serré contre la colonne ou l'enveloppant; anthère 
inclinée ou pendante; graine ordinaire . 4 f. Pogoniées. 
AAAA Labelle entourant la colonne; anthère inclinée ou dressée: 
graine crustacée ou ailée. . . . . . 4 g. Vanillées. 


Titi Labelle non en forme de bouclier, sans onglet, possédant un 
hypochilium distinct, souvent muni d'un éperon; anthère dres- 


sée; sépales libres . . . . . 4h. Céphalanthérées. 
Tiit Sépales et pétales soudés de différentes manières: anthère 
couchée . . . : = = + 1,1 & i Gastrodiées. 


** En’ général, there presque aussi longue que le rostellum et 
étroitement appliquée sur lui (il arrive rarement qu'elle possède 
un rostre allongé et qu'elle dépasse le rostellum) l'enlèvement de 


la masse adhésive du rostellum produisant habituellement une 

échancrure nettement marquée dans cet organe. 

+ Feuilles molles, à nervation réticulée rarement parallèle, jamais 
plissées suivant leur longueur; pollinies cireuses où pulvéru- 
lentes, non divisées en un grand nombre de masses définies. 

À Labelle tourné vers le bas . . . . 4 k. Spiranthées. 

AA Labelle tourné vers le haut . . . 4 m. Cranichidées. 

+ Feuilles comme chez les précédentes; pollinies sectiles, divisées 

en un grand nombre de masses définies . 4 1. Physurées. 

+11 Feuilles fermes, plissées suivant leur longueur; pollinies pulvé- 

rulentes, réunies par un long stylet détaché du rostellum, avec 

la masse adhésive en forme de bouclier. . 4 n. Tropidiées. 

I. Préfoliation convolutive : 8) feuille articulée, limbe foliaire de la gaîne 

laissant une forte cicatrice en se séparant; anthère ordinairement 

caduque lors de l'enlèvement des pollinies; ces dernières presque 
toujours cireuses, rarement molles ou granuleuses, 

1. Tiges grêles ou pourvues de plusieurs entre-nœuds également tubé- 
risés; fleurs presque toujours éperonnées ou formant menton, naissant 
près du sommet de la F4 feuillée; 8 pollinies cireuses avec caudi- 
ETS NES UE . . . . S. Thuniinées. 
Un seul entre- ad dé dire Ve colonne sans pied, fleurs 
presque toujours dépourvues d'éperon et de menton; 4 pollinies 
cireuses, presque toujours avec caudicules . . 6. Cœlogyninées. 
Tige feuillée à un seul entre-nœud tubérisé; les fleurs sont por- 
tées sur une tige spéciale aphylle du sympode: fleur avec colonne 
se prolongeant par un pied nettement accusé; 2 pollinies cireuses 
sans annexes, rarement 8 pollinies pourvues de caudicules. 

7. Collabiinées. 


D 


Le) 


II. Préfoliation duplicative. 

1. Verticilles extérieurs et intérieurs des enveloppes florales presque 
également développées. (En général, c'est l'intérieur, le labelle 
notamment, qui se trouve le plus en évidence). 

* Feuilles presque toujours non articulées: colonne sans pied ou 
formant un court éperon avec le labelle: 4 pollinies cireuses sans 
appendices . . . ‘1.1: . 8. Liparidinss 

** Feuilles presque re rte colonne avec pied distinct; 
2 ou 4 pollinies cireuses, attachées par un stylet très court à la 
masse adhésive. . . . . . . . . 9. Polystachiinées. 

*** Feuilles toujours tee colonne à pied court; pollinies 

cireuses attachées par un stylet mince et long à la masse adhésive. 

10. Podochilinées. 

*K** Feuilles toujours articulées, d'ordinaire étroites, graminiformes: 
fleurs petites, agglomérées; labelle guère plus grand que les 
sépales; 4 ou 8 pollinies cireuses, avec caudicules rudimentaires. 

11. Glomérinées. 

FKKK* Feuilles toujours articulées, charnuss ou coriaces, rarement grami- 
niformes; fleurs presque toujours grandes; labelle ordinairement 
beaucoup plus grand que les due 4, 6 ou 8 pollinies avec cau- 


ice distinctes. . . . « . . 43. Laelinees-. 
+ Pied de la colonne an avec les sépales pairs un menton, 
ou avec le labelle un court gobelet . . . 13 a. Ponérées. 


++ Colonne sans pied, entourée par le labelle ou soudée avec lui. 
13 b. Laeliées (Catéleyées). 


FEFESE Feuilles toujours articulées, multinerves: plissées longitadinale- 
ment dans le bourgeon: fleurs comme chez les précédentes; 
pollinies molles, granuleuses, sans appendicss. 

14. Sobraliinées. 

2. Verticille extérieur des enveloppes florales plus développé que 
l'intérieur et cachant souvent ce dernier: pied de la colonne distinct; 

2 Où 4 re saas RÉ ou pourvuss de caudicules rudimen- 


taires Se .- |. |. . -. 42. Pleurothallidinées. 
£) RES sur des pousses bel Lure ne faisant pas partie du 
En rs 4 . + . - . Pleuranthes. 


I. Préfoliation EE 

1. Entre-nœuds de la tige grêles ou également tubérisés. 
Homoblastees, 
+ Feuilles articulées ou non: labelle entourant la colonne ou soudé 
avec elle, dépourvu d'hypochilium; 4 ou 8 pollinies cireuses 
avec caudicules et sans stylet, . . . . . 45. Phajinées 
## Feuilles articulées; labelle membraneux, articulé avec le pied de 
la colonne ou formant avec lui un éperon; 2 ou 4 pollinies cireuses 
sans caudicule, avec stylet court. . . 46. Cyrtopodiinées. 
### Feuilles articulées; labelle souvent pourvu d'un hypochilium 
distinct, attaché sans articulation sur la base de la colonne: z on 
4 pollinies cireuses, sans candicules, avec stylet étroit souvent très 


"NE PRE . . . - 47. Catasétinées. 
2. Un seal nt cuisse développé en bulbe aérien: 2 ou 4 
pollinies avec stylet distinct. . . . . . . Météreblastées. 


# Inflorescence naissant au-dessous de la pousse feuillée nouvelle: 
labelle membraneux, sans hypochilium, articulé avec le pied de 
la colonne, d'ordinaire avec callosité longitudinale. 

18. Lycastinées. 
## Inflorescence naissant au-dessous de la nouvelle pousse feuillée: 
labelle charnu, presque toujours fortement attaché sur la base de la 
colonne par un hypochilium distinct. . . 49. Gongorinées. 
+111 Inforescence naissant au-dessus de la nouvelle pousse feuillée: 
labelle membraneux, articulé avec le pied de la colonne, presque 
toujours avec un arc calleux transversal 20. Zygopétalinées. 
II. Préfoliation duplicative. 

1. Tige feuillée à croissance terminale, limitée on définie: les diverses 
pousses annuelles réunies en sympode. . . . Sympodiales. 
Æ Labelle sans hypochilinm, membraneux, 2tHnls-muhile avec le 

pied de la colonne: pollinies sans appendices, avec caudicule ou 

avec stylet, mais jamais pourvues de ces deux pièces à la fois. 

+ Tige du type homoblastique; inflorescence naissant vers le 
sommet des tiges grêles ou du bulbe aérien; pollinies sans appen- 
dices ou pourvues d’une courte candicule, 24. Dendrobiinées. 

+1 Tige du type hétéroblastique; inflorescence naissant en dessous 

du bulbe aérien: pollinies sans appendices, très rarement avec 
un appendice étroit, linéaire . . . 22. Bulbophyllinées. 

711 Inflorescence naissant plus bas que la tige feuillée de même 

ordre; labelle avec callosités longitudinales: pollinies avec 
stylet distinct: presque toujours des bulbes aériens. 
27. Maxillariinées, 


+++ Inflorescence naissant plus haut que la tige feuillée de même 
ordre; labelle avec callosité en arc transversal: pollinies avec 
stylet distinct; pas de bulbes aériens, . 29, Huntleyinées. 
** Labelle membraneux, sans hypochilium, articulé avec grande 
mobilité au pied de la colonne; pollinies avec caudicule élargie 
transversalement et large stylet: feuilles en forme de lanières; 
pousse florale naissant plus haut que la tige feuillée de même 
ordre, € pt 5. Or 0 SRE CYRNARREES 
*%** Labelle membraneux, sans hypochilium, fortement uni au pied 
de la colonne ou concrescent avec lui pour former un godet; pol- 
linies avec caudicule longue et mince . . . 23. Thélasinées. 
*#%#* Labelle membraneux, sans hypochilium, fortement attaché sur le 
pied de la colonne, recouvert de callosités longitudinales ou de 
verrues, etc.; pollinies avec stylet distinct; pousse florale naissant 
plus haut que la tige feuillée de même ordre . 28. Oncidiinées. 
+ Anthère dressée . . . . . . 28 a. Notylices. 
++ Anthère couchée; floue munies d'un éperon calycinal, corollin 
Ou. ce . . . . . 28 b. Ionopsidées. 
+++ Anthère couchée; Ho non éperonées. 
A Périanthe fermé: labelle libre, dressé. . , 28 c. Adées. 
AA Périanthe ouvert; labelle coalescent avec la base de la colonne 
et presque toujours enroulé autour de celle-ci, 
28 d. Trichopiliées. 
AAA Périanthe ouvert; labelle ne se détachant de la colonne qu'à 
partir du milieu . . . . . . |. 28 e. Aspasiées. 
AAAA Périanthe ouvert: labelle tout au plus légèrement concrescent 
avec la base de la colonne, étalé librement. 
28 f. Odontoglossées. 
*%%#% Labelle charnu, avec hypochilium distinct ou tout entier hypochi- 
lien. 
+ Labelle charnu, tout entier hypochilien . .26. Sténiinées. 
++ Labellé avec hypochilium écarté, d'où s'échappe la colonne(1). 
25. Thécostélinées. 


2. Pousses feuillées à croissance terminale, illimitée ou indéfinie. 


Monopodiales, 
* Feuilles presque toujours non articulées; inflorescences uniflores; 
labelle onguiculé, trilobé , . . . . . . 30. Dichaeinées. 


** Feuilles presque toujours articulées; inflorescences presque 
toujours multiflores; labelle d’une configuration compliquée, 
souvent divisé en hypochilium, mésochilium et épichilium, ou 
muni d'un éperon, . . . . . . . 31, Sarcanthinées. 

A Clinandrium grand, SRIoILe. ere courtes, charnues. 
31 a. Pachyphylées. 


AA Clinandrium non pétaloïde: feuilles presque toujours en 
forme de lanières , . . ,. . . . . 31 b. Aéridées. 


(1) Colonne pliée brusquement, en avant au-dessus de la base. 


II. TABLEAU DE PFITZER POUR LA DÉTERMINATION DES GENRES. 


I. — DIANDRÉES. 


I. 1. APOSTASIIVNÉES (Apostasiées des auteursl1)), 
D Eros ébunmes fertiles",  — - : 1... =. . . . .!L Nouwiodia. 
B. Deux étamines fertiles . . . ; - + . 2. Apostasia. 
I. 2. CFPRIPEDILINÉES (Cybripédinées (7 OrcdEe diandres). 
A. Préfoliation convolutive. 
a. Ovaire uniloculaire: tégument seminal mince. 
3. Cypripedilum (Cyprip:dium). 
b) Ovaire triloculaire, profondément sillonné: tégument séminal crustacé. 
4. Selenipedilum (S:lenipedium). 
B. Préfoliation duplicative: ovaire triloculaire dans toute sa longueur ou seulement 
à la pointe; tégument séminal mince. . 5. Paphiopedilum (Paphiopedium). 


II. — MONANDRÉES (Orchidées monandres). 


II. A. MONANDRÉES-BASITONÉES (Basitones). 
II. À. 3. OPHRFDINÉES. 
II. À. 3. 4. Ophrydinées-Sérapiadées. 


A. 2 Bursicules distinctes: labelle ordinairement convexe et velu. . 6. Ophrys. 
B. Bursicules réunies en une seule, 
a) Masses adhésives distinctes. 
æ. Pétales 3-4-fides; labelle avec quatre longues franges, enroulées en-dessous 
dans le bouton . . . Sd QUES S,1 Te GOMIBOTIA. 
8) Pétales entiers; labelle mean l' DRE Le le bouton . 8. Orchis. 
b) Masses adhésives réunies en une seule. 
z) Connectif de l'anthère prolongé: partie médiane du rostellum comprimée 
latéralement; labelle avec lobe médian indivis, large . . 9. Serapias. 
B) Connectif non prolongé; partie médiane du rostellum en carêne. 
I. Labelle avec éperon court ou nul; lobe médian plus ou moins profon- 
dément divisé, courbé sur l’anthère dans le bouton. . . 40. Aceras. 
II. Labelle brièvement éperonné; dans le bouton, lobe médian en lanière 
enroulé en spirale devant l’anthère. . . . 11. Himantoglossum 
III. Labelle médiocre, trilobé avec deux bourrelets longitudinaux, plan dans 
Bhoulon Ce C7 ML re fteloe mit 0/11 20e AAA. 


II. À. 3. b. Ophrydinées-Gymnadéniées. 
A. Masses adhésives entourées d’une mince pellicule qui s'enlève avec elles. 


a) Labelle non éperonné; masses adhésives écartées. . . 43. Chamaeorchis. 
b) Labelle brièvement éperonné. 

x) Caudicule très courte; masse adhésive très grande. . 44. Herminium. 

8) Caudicule assez longue; masse adhésive petite, à peine plus large que la 

caudicule . . . . s sue le. + - 19. Cwloglossam. 


B. Masses adhésives nent à nu. 
a) Pétales non onguiculés, plans ou faiblement concaves. 
a) Labelle indivis ou avec lobes latéraux 2-3-lobés, quelquefois frangés; 
pétales entiers. 


(1) Les noms entre parenthèses sont ceux que l'on emploie couramment dans la 
langue horticole, 


— 256 — 


I, Lobe médian du rostellum formant un pli étroit entre les loges de 
l’anthère: surface adhésive tournée vers le labelle, 
1. Labelle indivis, dirigé enhaut . . . . . . 146. Nigritella. 
2. Labelle trilobé, dirigé en bas ou latéralement. .17. Gymnadenia. 
II. Rostellum large, rhomboïdal, avec sillon longitudinal bordé par le côté 
inférieur du rhombe adhésif . . . . . . . 18. Ponérorchis. 
III. Rostellum entier, large et bas, sans prolongement médian. 
1. Surface adhésive horizontale, tournée vers le labelle. 
* Labelle, 2-3- lobé. 
+ Labelle sans “2° à bord latéral avec deux lobes dressés con- 


tournés . . nou se à à + «+ A9- Stone 
++ Labelle éperonné. . . . . . . . . 20. Holothrix: 
** Labelle indivis . . . ._. + 121/ArTn9tta; 


2. Surface adhésive verticale, fécmante un tte droit avec la caudicule. 
22. Platanthera. 


B) Labelle avec lobe médian entier, étroit, et lobes latéraux à l'entrée de 


l’éperon; pétales entiers . . + + =. 23. Bicornele 
y) Labelle multilobé; pétales 2-5- es + à + . + : 2E Scopus 
b) Pétales onguiculés avec plateau épais concave . . . . 25. Huttonaea. 


C) Masses adhésives entourées par un repli du bord de l'anthère comme dans 
une bursicule. 
«) Labelle déchiqueté en franges étroites et nombreuses . 26. Bartholina. 
B) Labelle 3- lobé. 
1. Loges de l'’anthère s'ouvrant en dedans contre le lobe median du 
rostellum; plante sans feuilles. . . . . . .27. Derœmeria. 
2. Loges de l’anthère horizontales, s’ouvrant au-dessus; port d’Orchis. 
28. Perularia. 


II. A. 3. c. Ophrydinées-Habénariées. 


A. Lobes stigmatiques divergeant en V devant la base de l'anthère. 29. Neotinea. 
B. Lobes stigmatiques RUE ci or ou moins concrescents avec un 
plateau oblong . . , . « + . . 30. Diplomeris. 
C. Lobes stigmatiques entiers, non ‘bifides, séparés. 
a) Lobes stigmatiques larges, courts, épais; labelle quelquefois concrescent à la 
colonne; lobe moyen du rostellum presque aussi long que les latéraux. 
31. Cynosorchis. 
b) Lobes stigmatiques élancés ou cylindriques ; labelle libre. 
«) Éperon long, mince; rostellum entier ou en bonnet. . 32. Habenaria. 
Ê) Éperon court, large; base du labelle avec une bosse antéro-supérieure. 
33. Montolivaea. 
7) Éperon long: rostellum trilobé, à lobe médian long; lobes stigmatiques 
déchiquetés . . ru re he Rte an tete Tee OCR RER 
D. Lobes stigmatiques aa ss « +, #h «… . 35, Rœperocharns: 


II. A. 3. d. Ophrydinées-Saltyriées. 


A. Sépale médian et labelle non éperonnés. 
a) Stigmate avec deux petites branches linéaires dressées, . . 36. Pachites. 
b) Stigmate en coussin ou en fosse. 
æ) Pétales géniculés; labelle petit, charnu. . . . . .37. Forficaria. 
B) Pétales droits; labelle avec iarge onglet concave; plateau large, tridenté. 


38. Brachycorythis. 


+ 
rem 
> 
4 
a 
A4 


B. Labelle tourné en haut, avec deux éperons ou bosses; stigmate à la pointe d'une 
colonne plus ou moins allongée . . . . . 5 - . 99. Satyriun 


C. Labelle avec un éperon descendant. 
a) Sépale médian semblable aux sépales latéraux: labelle avec éperon, onglet 


concave et plateau entier ou trilobé . . . . . . . 40. Schizochilus. 
b) Sépale médian plus large que les latéraux; labelle linéaire, avec long éperon 
TE 0 À + + + «+ 41. Platycoryne. 


D. Sépale médian en casque, en sac ou er eue non éperonné. 
a) Labelle avec onglet large, concave ou sacciforme et plateau indivis: stigmate 


entier, libre du labelle . . . . . . . 42. Schizodium. 
b) Labelle avec sac basilaire; in labellaire exigu, étroit, dressé. 
43. Brownleea. 
c) Labelle plan. 


a) Deux masses adhésives distinctes; lobes latéraux du rostellum plus longs 
que le médian; stigmate indivis, très rapproché de la base du labelle. 


44. Disa. 
£) Masses adhésives réunies en une seule: lobes du rostellum égaux, étroits; 
stigmate nettement bifide. . . . . . . . . . 45. Herschelia. 
7) Masses adhésives réunies en une seule; rostellum membraneux, grand, 
plissé; stigmate indivis . . . . . . . . . . 46. Monadenia. 

II. À. 3. €. Coryciées. 
A. Sépales latéraux éperonnés ou sacciformes dorsalement . . . 47. Disperis. 


B. Sépales latéraux plans, libres. 
a) Plateau labellaire directement inséré sur la colonne; connectif de l'anthère 


Éa e & "FE - + . - 48. Pterygodium. 

b) Plateau Le inséré sur la cobene par un onglet distinct: connectif 
HOME. En ke Vs 5-00 AS CS ErS 

C. Sépales latéraux a _- à la FT ARE 50. Corycium. 


II. B. MONANDRÉES-ACROTONÉES. 


II. B. 4. ACRANTRBES. 
II. B. 4. :. Acranthes convolutives. 
PREMIÈRE Division. — Feuilles non articulées. 
Il. B. 4. MÉOTTIINÉES. 
II. B. 4. 4 Thélymitrées. 
A. Labelle sans appendice. . . : Hu Us : 0. Tholymitra. 
B. Labelle avec appendice charnu sur LÉ ie supérieure . . . 52. Epiblema. 


II. B, 4. d. Déuridées. 


A. Labelle tourné en bas, 
a) Pétales plus grands que le Ar médian ; celui-cientoure le bas du gynostème: 


il est plan en dessus. . . LORS COR DIET. 

b) Pétales beaucoup plus courts que 1 pre RS fortement excavé; sépales 
latéraux filiformes, dressés : feuilles étroites, planes . . 54, Orthoceras. 

c) Pétales semblables aux sépales latéraux, non filiformes: labelle entier ou 
bilobé; feuille cylindrique . . . à CSS ni a Cor: ET OÉIS, 

B. Labelle tourné en haut ; feuille Fr . « + -+ 56. Prasophyllum. 


II. B. 4, ©. Piérostylidées. 
A. Labelle tourné en haut, pédonculé en écusson: gynostème large, ailé, pétaloïde: 
ES den td oU cb ladts sre w 97: Caleana. 
17 


— 258 — 


. Labelle tourné en haut, en manteau; gynostème mince, avec 2 à 4 ailes sessiles à 
base étroite; fleur ouverte . ,. . . . . . 58. Drakaea. 
. Labelle tourné en bas, avec appendices variés à L base du plateau labellaire; 

gynostème large, ailé à la pointe; fleur en casque . 59. Pterostylis. 


II. B. 4. d. Caladéniées. 


. Ligne médiane du labelle unie ou avec deux bourrelets longitudinaux; labelle 
droit. 
a) Pétales allongés, égaux ou plus courts que le labelle. 60. Acianthus. 
b) Pétales filiformes, s'élevant au-dessus du labelle . . . 61. Cyrtostylis. 
. Ligne médiane du labelle rarement unie, ordinairement avec poils, verrues ou 
lamelles; labelle épais, tourné en bas. 
a) Gynostème court; plateau labellaire longuement velu . . 62. Calochilus. 
b) Gynostème allongé, large. 
x) Sépales latéraux larges, pédiculés; labelle avec petits lobes latéraux 
dressés et lobe médian convexe et poilu 63. Eriochilus. 
£) Sépales latéraux étroits, non pédiculés: lobes latéraux du labelle petits ou 
manquants. 
1. Plateau labellaire couvert de papilles . . . 64. Lyperanthus. 
2. Plateau labellaire avec lamelles . . . . . 65. Burnettia. 
3. Plateau labellaire avec prolongements, rarement lisse; pointe du 
gynostème membraneuse, élargie . 66. Caladenia. 
4. Plateau labellaïire avec den En extrémité de la colonne avec 
deux pointes nd 67. Chiloglottis. 
5. Plateau labellaire uni; 1 ou 2 appendices dressés à la base du labelle, - 
68. Glossodia. 
7) Sépales latéraux étroits; lobes latéraux du labelle dressés, plus grands que 
l'étroit lobe médian 69. Adenochilus. 


II. B. 4. €. Chloréées. 


. Sépales latéraux entiers. 


a) Labelle:plan, large, Écarté 45 4€ OL M SONT CRISE 
b) Labelle courbé en genou . . . 8080 a ait sr TAC PIB 
. Sépales latéraux déchiquetés à la Doints stats the ane T2 BIDARREE 


II. B. 4. f. Pogoniées. 


. Labelle libre, sans éperon ou avec deux éperons courts. 
a) Une feuille sur la tige uniflore au milieu de la hauteur. 
æ) Sépale médian grand, en forme de casque, sépales latéraux filiformes. 
73. Corysanthes. 
74. Pogonia. 


£) Tous les sépales égaux. . . 5 

b) Plusieurs feuilles espacées sur la Dee DIR A bre 
a) Labelle sessile; clinandrium denté . . . . . . . . 75. Cleistes. 
B) Labelle onguiculé, clinandrium à bord entier. . . . .76. Triphora. 


c) Un verticille de feuilles 77. Codonorchis. 
d) Une feuille basilaire pétiolée, Lee sans fouille, ne portant que des écailles 
x) Gynostème long, feuille avec limbe large, arrondi . . . 78. Nervilia. 
£) Gynostème très court, feuille allongée. 

I. Labelle tourné en bas, ordinairement égal aux sépales dressés. 
79. Chlorosa. 
II. Labelle tourné en haut, beaucoup plus large que les sépales filamen- 
_80. Cryptostylis. 


leUx. 0. De Du ARE 
e) Plantes sans nie Plantes D bolee, 


| 


} 


B. 


C. 


# 


A. 


æ) Pas de calice externe sur l'ovaire . . . . . . 81. Stereosandra. 
8) Un calice externe supplémentaire sur l'ovaire. . . 82. Lecanorchis. 
Labelle concrescent avec la base du gynostème, tourné en bas, avec court 
éperon; colonne élancée. . . . - .- . . . 83. Arethusa. 
Labelle dressé au-dessus, RE FLE à Etene court. 84. Galera. 


II. B, 4. g. Vanillées. 


Ovaire avec calice externe supplémentaire denté . . . 85. Epistephium. 
Ovaire sans calice externe. 
a) Labelle non soudé avec la colonne: fruit sec, trivalve; graine ailée. 
86. Galeola. 
b) Labelle concrescent avec la base de la colonne: fruit sec, hexavalve; graines 
non ailées. . OU Be axs 
c) Labelle soudé Dec avec É [ue Es ee fruit charnu, indéhes- 
cent; graines crustacées; ordinairement 2 pollinies épaisses, arquées. 


88. Cyrtosia. 
d) Labelle longuement soudé avec le gynostème; fruit charnu, tardivement 
déhiscent; graines crustacées; pollen pulvérulent . . . . 89. Vanilla. 


II. B. 4. k. Céphalanthérées. 


. Hampe florale feuillée; pas d'éperon véritable. 


a) Menton distinct; plateau labellaire allongé, presque complètement entouré 


Par ES spl. 20 2 - 2". : ee 90. Cephalanthera. 
b) Hypochilium concave, sans Eee te labellaire arrondi, sortant 
librement de l'enveloppe florale largement ouverte. . . 94. Epipactis. 
Hampe florale écailleuse, sans feuilles; labelle éperonné. 
a) Labelle tourné en bas; gynostème long . . . . . . 92. Limodorum. 
b) Labelle tourné en haut; gynostème court. . . . . . 93. Epipogon. 


Hampe florale écailleuse, sans feuilles; labelle non éperonné 94. Aphyllorchis. 


II. B, 4. #. Gastrediées. 


Sépales et pétales entièrement coalescents en une membrane tendue en bas. 
95. Gastrodia. 
Sépale médian et pétales latéraux concrescents en une lèvre supérieure, sépales 
latéraux concrescents en une valve inférieure. . . . . 96. Leucorchis. 


II, B, 4. À. Spiranthées. 


Sépale médian soudé avec les pétales pour former un casque: sépales latéraux 
unis à la base pour former un long éperon . . 0.14 Ni: Pol. 


. Sépale médian et pétales libres; sépales pañs ne labelle sacciforme 


9 ire PEU . | . . 98. Baskervillea. 


. Sépale médian et Fee = cs mais non coalescents; sépales latéraux 


libres. 

a) Fleurs en grappes tordues d'un côté; sépales latéraux quelquefois oblique- 
ment décurrents: fleur horizontale. . . . . . . 99. Spiranthes. 
8) Fleurs en grappes tordues de tous côtés; sépales latéraux décurrents et 
courbés à la pointe, comme le court labelle . . . 400. Sarcoglottis. 
7) Fleurs en grappes tordues de tous côtés; sépales latéraux brièvement décur- 

rents; labelle rapproché du gynostème; rostellum large, membraneux. 
101. Sauroglossum. 

ë) Fleurs en grappes tordues de tous côtés, avec menton distinct. 

102. Stenorrhynchus. 


— 260 — 


D. Sépales et pétales semblables, libres, écartés, 
x) Deux feuilles opposées sur la hampe florale . . . , ,. 1403. Listera. 
B) Hampe florale blanche, sans feuilles . . . . . . . 1404. Neottia. 


II, B. 4. !. Physurées. 


. Labelle avec éperon ou sac entre les sépales latéraux; gynostème court. 
a) Plateau labellaire simple ou bifide à la pointe, oblong. 
«) Deux prolongements à la base du gynostème s’enfonçant dans l'éperon; 


lobes stigmatiques séparés , . . + + «+ 105. Vrydagzynea. 
E) Pas de prolongements dans l'éperon, mais à droite et à gauche deux glandes 
distinctes dans l’éperon; stigmate simple . . . . 106. Cystorchis. 


b) Labelle épais, concave, resserré au-dessous de l'embouchure de l'éperon, avec 
plateau écarté ou courbé en bas. 
«) Rostellum dressé; éperon sans verrues internes. . , 407. Physurus. 
Ë) Rostellum horizontal; éperon avec verrues internes . 108. Queteletia. 
c) Labelle s'étendant au-dessus de la base de l’éperon en un long onglet; plateau 
labellaire bifide, large . . . . . + . . . 409. Anœctochilus. 
d) Bords du labelle coalescents avec É gynostème, plateau écarté, à bord 
entier ou frilopé. 20 MEN nez Se 110. Herpysma. 
. Labelle sans éperon ou avec sac court, ete enveloppé par les sépales laté- 
raux. 
a) Un long stylet entre les pollinies et la masse adhésive du rostellum, 
x) Sépales libres, gynostème sans prolongement. . . . .111. Zeuxine. 
B) Sépales coalescents oi milieu, gynostème avec deux prolongements 
étroits dressés. . . es EURE 112. Cheirostylis. 
b) Caudicules directement insérées sur la masse adhésive, labelle différencié des 
autres pétales. 
x) Gynostème court, droit, fleur symétrique, ouverte. 
I. Labelle dressé, indivis, avec base concave et plateau labellaire non 
mamelonné, stigmate simple. 
1. Labelle souvent velu intérieurement, mais sans verrues. 


113. Goodyera. 


2. Labelle avec deux bourrelets longitudinaux, gynostème avec deux 
114. Moerenhoutia. 


ailes pointues. . . 5 
3. Labelle avec verrues nr et deux lobes latéraux au bord de 
sa base ventrue, feuilles graminiformes. . . 115. Lepidogyne. 


IT. Labelle dressé, avec base ventrue verruqueuse intérieurement, plateau 


modérément mamelonné sans onglet, stigmate représenté par deux 
papilles." AS 116. Hetaeria. 


III. Base du labelie te souvent verruqueuse intérieurement, plateau 
labellaire à base étroite onguiculée, et au-dessus large et épais. 
1. Onglet labellaire denté frangé. . . . . (1) 117. Odontochilus. 
2. Onglet labellaire à bord entier, deux lobes stigmatiques distincts. 


118. Myrmechis. 


3. Onglet labellaire à bord entier, stigmate simple, large. 
119. Dossinia. 


E) Gynostème court, dressé, fleur ouverte, asymétrique, sépale médian plan 
ou peu cintré, 


(1) Entre l'insertion du labelle et la pointe du pied, il convient de signaler chez 
les Odontochilus, la présence d'une glande simple ou double, dressée. 


ai 


— 261 — 


I. Gynostème avec deux prolongements sur la face qui porte le stigmate. 
120. Macodes. 
II. Gynostème sans prolongements sur la face qui porte le stigmaie. 
121. Haemaria. 
7) Gynostème court, droit, sépale médian en casque, glanduleux au-dessus, 
base da labelle ventrue, nue intérieurement, plateau petit, linéaire. 
122. Hylophila. 


ë) Gynostème allongé, étroit. 
I. Sépales libres, labelle large, presque quadratique . 4123 Salacistis. 
II. Sépales étroits, rapprochés en tube SRE du milieu, labelle 
étroit, à base ventrue. . . . . - . .« 124. Platylepis. 
c) Caudicules directement insérées sur > masse adhésive, labelle étroit, plan 
ou concave, semblable aux autres pétales. 
a) Stigmate terminal, anthère longuement pédonculée. . . 125. Eucosia. 
6) Stigmate à la face antérieure de la colonne; anthère brièvement pédon- 
culée. 
| I. Deux lobes stigmatiques distincts, dressés. Clinandrium bas, 
126. Gymnochilus. 
II. Stigmate en coussin bilobé. Clinandrium membraneux, uni avec les 
bords du rostellum . . . .- - - *« 427. Argyrorchis. 
III. Stigmate transversal, D lines RE Se mi IAR VOIS 


4 
È 


II. B. 4. m. Cranichidées. 


A. Sépales latéraux formant un menton court ou éperonné. 
a) Labelle large, concave;: sépales latéraux formant menton et éperon. 
129. Wullschlaegelia. 
b) Labelle long, attaché à la base de la colonne, avec deux lobes latéraux longs, 
demi-tubulaires; lobe médian développé dans le menton. 
130. Pseudocentrum. 
B. Sépales latéraux ne formant pas de menton. 
a) Labelle inséré à la base du gynostème, libre. 
æ) Sépales non réunis en tube à la base. 
I. Labelle indivis, sessile, entourant le gynostème par sa base, platean 


écarté, plan ou concave, large . . . . . . 431. Altensteinia. 
II. Labelle sessile, entourant le gynostème par ses lobes latéraux, lobe 
terminal renversé en arrière. . . …. st. 0800 Picrichis. 

III. Labelle onguiculé ou sessile, concave e FÉES clinandriam court. 
133. Cranichis. 
IV. Labelle onguiculé, avec plateau en casque, indivis ou 3-lobé: clinan- 
drium membraneux, long. . . . + . - 434. Gomphichis. 
8) Sépales formant un mince tube à la He . . |. - 135. Stenoptera. 
b) Labelle concrescent avec la base des sépales et formant un gobelet épais, 
concave en casque. . . . . «+ . 436. Prescottia. 
c) Onglet labellaire, pétales . Ps ee RARE en tube, plateau labellaire 
ordinairement plan . . . . . «+ . 137. Manniella. 
d) Labelle et pétales insérés sur le MERE né - . 138. Ponthieva. 


II. B. 4. #. Tropidiées. 


A. Labelle à base large, sacciforme, rétréci au-dessus . . . . 439. Tropidia. 
B. Labelle à base étroite, élargi supérieurement . . . . . 440. Corymbis. 


— 262 — 


L . C2 
DEUXIÈME Division. — Feuilles articulées. 
II. B. 5. T'HUNIINÉES. 


A. Base de la colonne n'avançant pas ou formant éperon avec le labelle. 
a) Tige élancée, non tubérisée à la base. 
x) Sépales et pétales élargis, Pr labelle ordinairement épéronné; 
8 pollinies étroites. . . RAS s % + AA TRUE 
B) Sépales et pétales écartés; boite non Lien. 8 pollinies 


?142. Arundina. 
b) Tige très élancée, épaissie à la base en tubercule . . . . 143. Bletilla. 


B. Base du gynostème formant menton avec les sépales latéraux 144. Trichosma. 
II. B. 6. COLLABIINÉES. 
A. Pollinies 8, avec caudicules. + . . . . . . . 145. Nephelaphyllum. 
B. Pollinies 2, sans appendices. 
a) Menton allongé en éperon . . . . . . . . . . 146. Collabium. 


b) Menton court. 
x) Gynostème avec petites cornes au milieu de la hauteur. 


147. Chrysoglossum. 
B) Gynostème sans cornes. . . . . . . . . . 1448. Diglyphosa. 


II. B. 7. COELOGYNINÉES. 


A. Pollinies distinctement caudiculées. 
a) Sépales rapprochés; enveloppes florales en boule; tubercule membraneux, 
rudimentaire. . . . RE + +. . « ?4149. Josepha 
b) Sépales écartés ou Ares Dee au moins ceux de l'année précédente 
manifestement formés pour la fioraison. 
a) Gynostème élancé. 
I. Base du labelle sans expansion en sac vers le bas. 


1. Feuilles et tubercule persistants. . . . . . 150. Cœlogyne. 
2. Feuille et tubercule annuels . . . . . . . . 151. Pleione. 

II. Base du labelle avec expansion en sac. 
1. Sépales creusés en sac à la base . . . . . . 152. Neogyne. 
2. Sépales plans; nouveau tubercule do attaché à la pointe de 
l'ancien 470 . + . - 453. Otochilus. 
6) Gynostème Pa bncllenene re ailé au- den: labelle creusé en sac 
à la bases, ::" « ; « + « 454. Pholiinia: 
y) Gynostème court avec its Pros Fee distinctes du clinandrium 
membraneux; labelle plan à la base . . . . . 155. Platyclinis. 
B. Pollinies sans caudicules . ..: … .: . …. . . + : . 156 Sturmia: 


II. B. a. 8. Acranthes duplicatives. 
II. B. 8. L&PARIDINÉES. 


A. Des feuilles; gynostème sans pied. 
a) Labelle non en forme de sabot. 
«) Feuilles non articulées, le limbe ne se séparant pas de la gaine. 

I. Anthère dressée: gynostème court; labelle tourné en haut. 
. Anthère non tombante, dégageant la pollinie par raccourcissement 
de la paroi. #0. k . . . . A56bis Malaxis. 

2. Anthère tombante, non rétectile, S ouate en dedans. 
157. Microstylis. 
3. Anthère coalescente avec le rostellum, ordinairement avec loges 
séparées s'ouvrant latéralement . . . . . . . 158. Orestia. 


— 263 — 


II. Anthère couchée, tombante. 
. Labelle Ga bifide, avec deux lamelles déchiquetées à la 


1 RC ERNREEN : . . «+ .« 159. Ephippianthus. 
2. Labelle variable, sans Lucile déchiquetées. . . 160. Liparis. 
8) Feuilles articulées; limbe se détachant de la gaîne. 
I. Des tubercules aériens; limbe des feuilles plan . . 161. Cestichis. 
II. Sans tubercules aériens; limbe des feuilles vertical. 162. Oberonia. 
b) Labelle en sabot . . . . . . . 163. Calypso. 


B. Sans feuilles; gynostème dont le Su re un menton avec les sépales latéraux. 
164. Coralliorrhiza. 
II. B. o. POLFSTACHYINÉES. 
A. Labelle éperonné. 
a) Tubercule souterrain et une seule feuille: éperon mince. ?165. Tipularia. 
b) Pas de tubercules souterrains; pousse très feuillue. 
æ) Feuilles non articulées. . . . . . . . . . 1466. Acrolophia. 
B) Feuilles articulées; éperon en corne . . . . . 167. Galeandra. 
B. Labelle non éperonné. 
a) Tubercule souterrain à une ou 2 feuilles; labelle onguiculé ? 168. Oreorchis. 
b) Pas de tubercules souterrains. 
æ) Sépales latéraux formant menton avec le pied du gynostème. 
I. Gynostème court; menton très épais; tubercule aérien court. 
169. Polystachia. 
II. Gynostème allongé; menton faible; tige élancée. . 170. Ansellia. 
B) Gynostème sans pied . . . . . . . . . . 74171. Bromheadia. 


II. B. 10. POBOCHILINÉES. 


A. Pollinies 4; labelle sans appendices ou un seul appendice à la base. 
172. Podochilus. 
B. Pollinies 8; labelle avec appendices sur le plateau. . . 173. Appendicula. 


II. B. 11. GLOMERINÉES, 
A. Tiges très feuillées, 


a) Labelle concave à la base ou faiblement sacciforme . . . 174. Earina. 
bi rabelle plan: 4 pollinies 0. 5 2 40 5 «2 … “275: Glomera: 
c) Labelle plan; 8 pollinies. . . . + . + 176. Agrostophyllum. 
d) Labelle convexe, avec callus AAPIE. + + « . +, 177. Callostylis. 


B. Une ou deux feuilles seulement à l'extrémité des tiges, 
a) Sépales libres; tiges élancées; feuilles graminiformes ou jonciformes. 
178. Ceratostylis. 
b) Sépales concrescents en tube; tige tuberisée; feuilles larges, en lanière. 


? 179. Cryptochilus. 
II. B, 12. PLEUROTHALLIDINÉES. 


A. Les trois sépales nettement coalescents; labe]le tourné en bas. 

a) Fleurs tubuleuses, s'ouvrant par trois valves courtes. . 180. Physosiphon. 
b) Fleurs à base tubuleuse ou EUR avec trois valves longuement prolon- 
eées _: à - ? . . . + 181. Masdevallia. 

c) Fleurs Énmiées 2 au Ds s'ouv Per Déteu par deux fentes. 
182. Cryptophoranthus. 
d) Fleur en cloche, presque plane, avec 3 valves courtes: labelle et pétales 
scmblables, + -.. > . . = ; ar -c0tL0d: DEGIIS. 
B. Sépales latéraux placés en dessus, Re FE bateau; labelle tourné 
enhaut , . , . , . . . . . . . . . . 184. Scaphosepalum. 


C. Sépales latéraux libres ou coalescents en une pièce plane ou faiblement con- 
cave, bifide; sépale médian libre; labelle tourné en bas. 
a) Sépale médian et pétales prolongés en filet mince, avec pointe terminée par 
une boule; pollinies 4. . . . . . + + + 1485. Restrepia. 
b) Sépales et pétales sans pointe terminée ne une boule. 
a) Gynostème sans expansions latérales. 


I. Pétales étroits: pollinies 2 ou 4. . . . . . 186. Pleurothallis. 
II. Pétales dilatés transversalement; pollinies 2. . . 187. Lepanthes. 
III. Pétales semblables aux sépales; pollinies 8 . . . 188. Octomeria. 
B) Gynostème avec deux appendices latéraux. . . 189. Brachionidium. 


II. B. 13. LAELIINÉES. 


II. B. 13. a. Laeliinées-Ponérées. 


A. Menton plus ou moins distinct; labelle non uni à la base du gynostème; il n'est 
même pas creusé à la base. 
a) Tiges minces, très feuillues; labelle allongé, courbé en «2. 190. Isochilus. 
b) Labelle non courbé en w. 
«) 4 pollinies; tige élancée ou quelquefois épaissie, avec des pousses latéra- 
les emboîtées près de la pointe du tubercule aérien. 
I. Menton indiqué seulement par les sépales latéraux. 
191. Tetragamestus. 
II. Menton distinct, normal. 
1. Pollinies ovoïdes où en boule. . . . . 192. Scaphyglottis. 
2, Pollinies comprimées ensemble . . . . . . . 193. Ponera. 
8) 6 pollinies; port des précédents. . . . . . . 4194. Hexadesmia. 
y) 8 pollinies. 
I. Pas de tubercules; inflorescence sur une pousse qui porte des feuilles. 
195. Octadesmia. 
II. Des tubercules: inflorescence portant seulement des écailles. 


196. Cœlia. 
B. Un menton: labelle formant avec le gynostème un gobelet, ou base du labelle 
creusée. 
a) Jeune pousse au sommet de la pousse plus âgée . . . . .197. Hexisea. 
b) Jeune pousse à la base de la pousse plus âgée. 
a) Tige très feuillée. 
I. Plateau labellaire trifide . . . . . . . . 198. Amblostoma. 
II. Plateau labellaire indivis. . . . . + «+ 499. Seraphyta: 
III. Lobes latéraux du labelle formant à ei base du ee. deux oreillettes 
dressées . . . . . . . 200. Diothonaea. 


B) Tige avec une seule fouille au nee 
I. Fleurs très nombreuses, en long épi dense; 8 pollinies. 
201. Arpophyllum. 
II. Fleurs peu nombreuses, en grappes courtes; 4 pollinies. 


202. Hartwegia. 
II. B. 13. d. Laeliinées-Cattleyées. 


A. 4 pollinies dans l’anthère, portées par 4 caudicules faibles, 
a) Labelle plus ou moins soudé au es à plateau labellaire ordinairement 


Écatté Le. dr 00 . - + . . 203. Epidendrum 
b) Labelle libre, s date à ; ce avec ve bosses creuses sur la face supé- 
Hieure. . + - . 204. Diacrium. 


c) Labelle libre la Re da ape, nr, É gynostème, sans bosse. 
205. Cattleya. 


— 265 — 


B. 8 pollinies couplées, unies par des caudicules parallèles. 
a) Stigmate creux sur la face labellaire de la colonne; anthère couchée. 
æ) Base du labelle passant graduellement au plateau. 
I. Sépales et pétales non ondulés; labelle entourant nettement la colonne. 
206. Laelia. 
II. Sépales et pétales ondulés; labelle écarté . . 207. Schomburgkia. 
B) Base du labelle épaisse, enroulée autour de la colonne, brusquement élar- 


gie en un large plateau écarté . . . . . . . 208. Brassavola. 

b) Lobes stigmatiques formant des prolongements à droite et à gauche de la 
colonne: anthère pressée, dressée . . . . . . . 209. Sophronitis. 

. 8 pollinies réunies en faisceau; anthère dorsale. . . 210. Meiracyllium. 


Ü Q 


. 6 pollinies; anthère cachée sous 2 pointes dans un enfoncement de la colonne. 


211. Leptotes 
II. B. 14. SOBRALIINÉES. 


A. Tige élancée, sans tubercule basilaire; labelle non barbu, 8 pollinies. 
a) Labelle épais, concave-ventru. 
æ) Fleurs en grappes denses, la plupart du temps avec bractées colorées; 
labelle avec deux bourrelets longitudinaux basilaires, séparés ou connés. 
212. Elleanthus. 


8) Fleurs petites, en courtes grappes ombelliformes ; labelle séparé en deux 


parties ventrues par un bourrelet transversal. . . . 213. Sertifera. 

7) Fleurs grandes, solitaires ou peu nombreuses; labelle uni ou avec lamelles 
ÉEOIES Les à sie 2.1 214%: S0hral a: 

b) Labelle avec courtes Mons PARA Het le gynostème court avec 

les larges expansions du lobe médian . . . . + . 215. Fregea. 

B. Tige élancée, avec petit tubercule basilaire, 1 ou 2 | false labelle barbu, 
pollinies en nombre indéterminé . . . . . . . . . 216. Calopogon. 
Go ns feules 294 izr ses LR at, ir:  Heralectris. 


II. B. bd. PLEURANTHES. 


II. B. b. «. Pleuranthes-convolutives. 


PREMIÈRE Division. — Homoblastées. 


II. B. 15. PHAJINÉES. 


À. Feuilles non articulées. 
a) Labelle libre entourant le gynostème . . . 00 NS" PhaIUs: 
b) Labelle coalescent avec le gynostème, avec tn écarté 219. Calanthe. 
B. Feuilles articulées. 
a) Sépales et pétales écartés, non rapprochés en urne ni coalescents, 
x) Labelle coalescent avec le gynostème, s'écartant au dessus. 
220. Preptanthe. 
8) Labelle entourant étroitement le gynostème:; plateau écarté. 
221. Limatodes. 
7) Sépales latéraux formant un long éperon; labelle attaché au pied du 
gynostème, de manière à laisser libre l'embouchure de l’éperon. 
222. Calanthidium. 
ë) Fleur entière courte ou tout à fait sans éperon; labelle entourant la colonne 
vers le haut, avec ses lobes latéraux redressés. 
I. Menton distinct. 
1. 8 pollinies. 
* Tubercule aérien court, feuillé seulement à son extrémité; sépales 


— 2000 — 


et pétales étroits; pollinies comprimées latéralement, avec très 
faible caudicule . . . . by 223. Tainia. 
*#* Tubercule aérien fusiforme, feuillé sur toute sa longueur; sépales 
et pétales larges; pollinies aplaties par dessus, couchées sur une 
surface caudiculaire large . . . . . . . . 224. Chysis. 
#3ek Tubercule aérien court, feuillé seulement à son extrémité; pollinies 
ovoïdes . À 225. Ipsea. 
2. 4 pollinies; labelle soudé avec JA ba dun gynostème. 
226. Plocoglottis. 
II. Pas de menton. 
18 re 
*# Lobe médian du labelle large, d'une venue. . . 227. Bletia. 
*#*%* Lobe médian du labelle onguiculé . . .228. Spathoglottis. 
2. 4 pollinies. . . « + + . 229, Aplectrum- 
b) Sépales rapprochés en urne, Te en Re de selle. 
230. Acanthephippium. 
c) Sépales coalescents en un mince tube trilobé . . . .231. Anthogonium. 
C. Les feuilles manquent …. 11: 5 à LE ei 21.00 020,0232-Pachys tome 


II. B. 16. CFRTOPODIINÉES. 


A. Fleurs éperonnées ou sacciformes à la base. 
a) Labelle presque complètement transformé en cuiller concave, plateau court. 
233. Geodorum. 
b) Labelle seulement éperonné à la base ou sacciforme, plateau long. 
x) Labelle large. 
I. Sépales étroits et moins colorés que les pétales, . 234. Lissochilus. 
II. Sépales et pétales semblables. . . . . . . . 235. Eulophia. 
B) Labelle étroit, linéaire. . . . . . . «+ . . 236. Gremastra. 
B. Fleurs non éperonnées, non creusées en sac à È base. 
a) Gynostème avec deux ailes près de la pointe, labelle onguiculé. 
237. Dactylostalix. 
b) Gynostème avec deux languettes basilaires avançant vers le labelle. 
238. Pteroglossaspis. 
c) Gynostème sans appendices. 
«) Sépales latéraux insérés sur le bord de l'ovaire, labelle inséré seul sur le 
pied du gynostème . . . . . . . . 239. Cyrtopodium. 
B) Sépales latéraux et labelle rétrécis à la base, insérés sur le pied du 
gynostème . . . . . + -. . 240. Goyenis 
y) Sépales latéraux ne sur É o du gynostème et Re, menton. 


241. Warrea. 
II. B. 17. CATASÉTINÉES. 
A. Fleur hermaphrodite, monomorphe; gynostème tordu . . . 242, Mormodes. 
B. Fleur di- ou trimorphe; gynostème non tordu. 
a) Gynostème épais, droit, avec antennes dans les fleurs à et hermaphrodites. 
243. Catasetum. 
b) Gynostème élancé, courbé, sans antennes . . . . . .244. Cycnoches. 


DEuxiÈèME prvision. — Hétéroblastées. 


II. B. 18. LYCASTINÉES. 


A. Pollinies fixées ensemble sur un stylet. 
a) Fleur presque fermée, ronde, . . . ,. . . . , . 245. Anguloa. 


— 267 — 


b) Fleur avec sépales nettement écartés. 

«) Inflorescence uniflore ou pauciflore; stylet long, étroit. 
I. Inflorescence uniflore, dressée; labelle tourné en bas, 246. Lycaste. 
II. Inflorescence pauciflore, pendante, labelle en haut . 247. Paphinia. 

8) Inflorescence très florifère ; stylet court. 

I. Sépales latéraux décurrents sur le pied du gynostème. 248. Xylobium. 
II. Pétales décurrents sur le pied du gynostème, sépales latéraux insérés à la 
pointe du pied par une base étroite . . . . . 249. Batemania. 
B. Pollinies attachées sur deux stylets distincts. . . . . 250. Bifrenaria. 


II. B. 19. GONGORINÉES. 


A. Anthère pendante, labelle dirigé en bas. 
a) Pièces du périanthe rapprochées, sépales et pétales ordinairement semblables. 
x) Sépale médian libre, uni latéralement, mais par sa base seulement, au 
pied du gynostème. 
I. Hypochilium séparé du gynostème par un fort étranglement. 

251. Lacaena. 

II. Hypochilium uni au gynostème par une partie élargie, avec pleuridies. 

1. Hypochilium et épichilium articulés, mobiles; stylet court. 

252. Peristeria. 


2. Hypochilium et épichilium réunis d'une manière fixe; stylet allongé. 
253. Acineta. 
III. Labelle entier, à bord indivis ou seulement tridenté à la pointe, sans 
pleuridies, concave. 
1. Labelle entier, sans callus, très plissé à la pointe. 254. Cœliopsis. 
2. Labelle avec petit callus tridenté et bourrelet longitudinal. 
255. Sievekingia. 
8) Les trois sépales coalescents à la base, lobes latéraux du labelle dépassant 
le lobe médian . EU 256. Lycomormium. 
b) Enveloppes florales né ouvertes ou même rejetées en arrière. 
æ) Sépales latéraux beaucoup plus grands que le médian, pétales asymétriques, 
labelle onguiculé, avec épichilium en casque . . . 257. Coryanthes. 
B) Sépales et pétales égaux, épichilium non en casque. 
I. Hypochilium creux, épichilium plan. 
1. Quatre pollinies d'rectement insérées sur la masse adhésive élargie 


transversalement. 258. Paradisanthus. 


2. Quatre pollinies avec stylet distinct | MAS Cure RS AGARISIA; 

3. Deux pollinies avec stylet distinct . . . . . 260. Stanhopea. 
IT. Tout le labelle hypochilien, creux, pas d’épichilium. 

1. Sans auricules à la base. . . . . . 261. Stanhopeastrum. 

2. Avec anricules à a base, 0.2.0 2 > © 262. Chrysocycnis. 


III. Hypochilium non creux. 
1. Hypochilium avec pleuridies larges, membraneuses, gynostème très 


nee nr 141. * 263. Polycycnis. 
2. Hypochilium avec peuridies ÉÉDIES charnues; gynostème court, 
ÉRAIS | LUE: PELLE NE Houilotia. 
3. Hypochilium ue en ne d’ ni, sans pleuridies, épichilium 
crier SN ANNE ere 1800. Kegblia. 


B. Anthère pendante, labelle Fee en ut 
a) Sépales latéraux concrescents en casque: ovaire tordu . . 266. Schlimia. 
b) Sépales latéraux libres; ovaire non tordu, mais courbé en arc. 267. Gongora. 
C. Anthère dressée sur le dos du gynostème . . . . . . . 268. Cirrhaea. 


A 


— 268 — 


II. B. 20. &FGOPETALINÉES. 


Labelle attaché par un onglet étroit. 
a) Sépales et pétales étroits, écartés, 2 pollinies sessiles. 269. Kœllensteinia. 
b) Sépales et pétales larges, rapprochés en une demi-sphère, 4 pollinies pédon- 


Cuées" Hess RE nr 4 
B, Labelle non  cHunbut RC - 
a) Labelle avec callosité en fer à cheval. 
«) Plateau labellaire lisse ou velu; gynostème n'étant ni large ni ailé ; anthère 
sans prolongement . . . . : . . . + 271. Zygopetalum. 
B) Plateau labellaire lisse ou ane ere a ailé; anthère avec 
prolongement long et étroit . . , . . . . . 272. Zygosepalum. 
7) Labelle avec dents pectinées nombreuses . . . . . 273. Galeottia. 
b) Labelle sans callosité arquée, avec quelques lamelles longitudinales séparées. 
274. Eriopsis. 
Il. B. b. 8. Pleuranthes duplicatives. 
PREMIÈRE Division. — Sympodiales. 
II. B. 21. DENDROBIINÉES. 
A. Lobes latéraux du labelle réunis en anneau . . . . . . 275. Latourea. 
B. Lobes latéraux du labelle libres. 


a) Deux ou quatre pollinies entières, sans appendices. 
x) Feuilles planes, rarement charnues ou presque cylindriques. 
276. Dendrobium. 
B) Feuilles comprimées latéralement, verticales . . . . .277. Aporum. 
b) Pollinies 8, avec caudicules. 
«) Feuilles planes, rarement presque cylindriques. 


I. Sépales libres. . . . LÉ NOR ANNE 278. Eria. 
II. Sépales coalescents en be Mise : «01. 2 279 P0TRE 
£) Feuilles verticales, comprimées Poe de - . . 280. Phreatia. 


II. B. 224. BULBOPHYLLINÉES. 


A. Sépales latéraux insérés à la pointe du pied par une base étroite. 


a) Sépales latéraux éloignés du pied et écartés du labelle; gynostème avec deux 
stélidies étroites s'avançant du côté du labelle . . . . 281. Drymoda. 
b) Sépales latéraux rapprochés par leurs bords supérieurs du pied, séparés de 
celui-ci par une fente étroite: gynostème sans pleuridies. 282. Monomeria. 
Sépales latéraux avec base large, attachée dans toute la longueur du pied, formant 
menton. 
a) Anthère s’ouvrant au-dessus, pollinies avec masse adhésive faible. 
283. Sunipia. 
b) Anthère s'ouvrant en dedans, pollinies par paires, avec stylet et masse adhé- 
SIVEN A à TE D RO Ce en ce |. 
c) Anthères oran en dessous. 
«) Labelle convexe ou pas encore ventru, avec ou sans court onglet à la base. 
I. Sépales latéraux séparés seulement à la base, se recouvrant d'ordinaire 
par leur bord externe: fleurs en grappe ombelliforme. 
285. Cirrhopetalum. 
II. Sépales latéraux libres ou à bords se couvrant quelquefois dans le 
bouton; anthère sans prolongement au connectif, pollinies normales. 
1, Fleurs sans bractées, hampe florale cylindrique. 
286. Bulbophyllum. 


— "269 — 


2. Fleurs avec bractées concrescentes avec l'ovaire; hampe florale 
charnue, fusiforme . . . . . . . . 287. Bulbophyllaria. 
3. Fleurs sans bractées; sépale médian plus grand que les autres sépales. 
hampe fusiforme, plane, foliacée. . . . .288. Megaclinium 
III. Sépales latéraux libres; anthère avec connectif à long prolongement; 
fleur à symétrie rayonnée: inflorescence uniflore. . . .289. Trias. 
IV. Sépales latéraux libres, formant menton; pétales réduits à une languette 
frisée REZ - = . . -. . 290. Epicranthes. 
£) Labelle Eubie, concave ou fu RER UF: gynostème avec deux appen- 
dices im Us grue ss 23k Doslrachilian. 

?) aie ventru à la un 
I. Sépales latéraux concrescents jusqu’à la pointe . . 292. Osyricera. 
II. Sépales latéraux libres, largement écartés. . . 293. Acrochaene. 
ë) Labelle avec long onglet em?. . . . . . . . ?294. Panisea. 


II. B. 23. THÉLASINÉES. 


A. Sépales rapprochés; 8 pollinies . . . «< + «+ . 295. Thelasis. 
B. Sépale médian s'écartant des sépales Ladte ob jusqu'à la pointe: 
RUES) EURE PR PS EM ANNE US 296: Arias. 


II. B. 24. CFMBIDIINÉES. 


A. Pollinies insérées séparément sur deux excroissances du stylet, fleurs non 
distinctement éperonnées. 
a) Beaucoup de feuilles, pas de tubercule:; tige élancée. 
z) Bords labellaires RES libres; stylet épais, élargi transversale- 
En 0. . . + «. . - 297. Grammatophyllum. 
6) Bords PTE concrescents sous le gynostème; stylet arrondi, 
298. Wailesia. 
RER RE À 
B. Fleurs avec un gros éperon . . . + *- *. -. 300. Eulophiopsis. 
C. Pollinies insérées ensemble sur le . let, sans excroissances; fleurs sans éperon. 
a) Tige courte plus ou moins tubérisée, revêtae par les gaînes des feuilles, ne 
devenant nettement visible que sur les vieux tubercules. 
æ) Tige peu renflée; pollinies pyriformes, insérées sur un stylet quadratique 


par leur extrémité épaissie . . - «+ «+ - 301. Cyperorchis. 
8) Tige nettement renflée; pollinies on insérées sur un stylet épais, 
élargi transversalement, . . . - + + + 302. Cymbidium. 


b) Tige courte tubérisée; feuilles hr: à l'extrémité du tubercule, de sorte 
que celui-ci n'est pas entouré par les gaïnes foliaires. 
æ) Sépales latéraux libres formant menton transversal, dressé. 
303. Grammangis. 
8) Sépales latéraux concrescents à la base, avec base étroite: stylet arrondi. 
304. Grobya. 
II. B. 25. THÉCOSTÉLINÉES, 


Caractères da groupe. . . . - - - . . . . . 205. Thocostole. 
II. B, 26. STÉNIINÉES. 
CEE Rin EXO -u - = 4 NL '.,: 0" «2306. Stonia. 


II. B. 2;. MAXILLARIIVNÉES. 
A. Fleurs sans éperon. 
a) Sépales étalés, non unis en tube à la base, 
x) Labelle attaché par un onglet légèrement mobile. 
I. Pollinies presque directement attachées à la masse adhésive. 


. Feuilles non allongées en forme de cravache. 

*% Masse adhésive en massue; gynostème presque sans pied. 
307. Mormolyce. 

#% Masse adhésive écailleuse; gynostème avec pied distinct. 
308. Maxillaria. 
2. Feuilles longues en forme de cravache:; stylet très épais, élargi 
iransvereilement. de 2 pe: (O0). DORE 
II. Pollinies avec long stylet . . . . . . . 310. Camaridium. 

8) Labelle non articulé ou un peu adhérent à la base de la colonne. 

311. Ornithidium. 
b) Sépales rapprochés, formant tube à leur base . . 312. Trigonidium. 
DSPleurs époronnénst. M Re 2 + Le" NRA 0e OISE Eulophidium. 


II. B. 28. ONCIDIINÉES. 
II. B. 28. 4. Oncidiinées-NWotyliées. 


. Pétales beaucoup plus larges que les sépales, labelle indivis, de même taille que 
les pétales; fleur étalée dans un plan, 4 pollinies . . . . 314. Telipogon. 
. Pétales essentiellement différents du labelle. 

a) Labelle avec 2 lobes basilaires ordinairement faibles: gynostème court; fleur 


plane: 4 pollinies . . . . . . . 315. Trichoceros. 
b) Labelle avec bords He RÉAL RES ES la colonne: 2 pollinies avec 
stylet mince . . . . . . . 316. Macradenia. 
c) Labelle avec lobe sin be, ee More courts, larges, dentés; 2 pol- 
linies sur un stylet court . . . . . . . 317. Warmingia. 
d) Labelle avec plateau distinct, le Lee triangulaire ou en rame, 2 polli- 
nies sur un stylet long et mince. . . . . . . . . . 818. Notylia. 


II. B. 28 b. O@ncidiinées-Ionopsidées. 


. Éperon visible à la base de la fleur, non caché dans le pédoncule floral. 
a) Labelle éperonné; sépales non éperonnés ou à base concave. 
«) Sépales pairs libres; fleurs larges . . . . . 319. Trichocentrum. 
8) Sépales pairs concrescents. 
I. Éperon court et ample, fermé par un plateau tridenté; labelle non ongui- 
culé: gynostème court; stylet large . . . . . 320. Papperitzia. 
II. Embouchure de l'éperon ouverte, ou une bosse solide à la place de 
l'éperon, labelle onguiculé; gynostème élancé; stylet faible. 
321. Rodriguezia. 
b) Sépales pairs quelquefois concrescents et en sac à la base, formant aussi parfois 
un court éperon à la base de la fleur; labelle long, onguiculé, avec lobes laté- 
raux petits et lobe médian élargi, dressé; gynostème court. 322. Ionopsis. 
c) Sépales pairs concrescents et éperonnés à la base, dans cet éperon sépalaire 
non fendu latéralement, on trouve soit un éperon labellaire bifide, soit deux 
éperons distincts. 
«) Éperon court; lobe médian du labelle court; fleur plane. 
| 323. Scelochilus. 
£) Éperon long et mince; lobe médian du labelle dépassant beaucoup les 
sépales; fleur plane, . . . + « . . 824. Comparettia. 
y) Éperon long et mince; lapelle Pa feuilles équitantes. 
325. Plectrophora. 
d) Pied du gynostème fortement abaissé; sépales pairs décurrents, formant 
un éperon fendu sur le côté tourné vers le labelle ou écarté de la base de la 
fleur. 


B. 


— 271 — 


a) Éperon long et mince, étroitement fendu . 326. Diadenium. 
8) Éperon court ample, écarté de la base de la fleur . 327. Chaenanthe. 
Éperon caché dans l'axe floral, non visible au dehors. 
a) Labelle long, onguiculé, bilobé . 328. Saundersia. 
b) Labelle court, dressé, à bord entier. . . . . . . . 329. Brachtia. 


II. B. 28. c. Oncidiinées-Adées, 


. Feuilles planes, en lanière. 


a) Labelle étroit, long, indivis; tous les sépales libres. . . . . 330. Ada. 
b) Labelle court, ser avec plateau à bords repliés en dessous; sépales 
à 331. Mesospinidium. 
c) Labelle onguiculé, avec es FE stylet large et court, avec masse 

adhésive réniforme . 332. Neodryas. 
d) Labelle onguiculé, avec in Le stylet en forme de soie, mince, avec 


pairs connés . 


une petite masse adhésive allongée . . . . . . . . 333. Sutrina. 
B. Feuilles isolatérales, dressées. . . . . . . . . . . 334. Trizeuxis. 
C. Feuilles cylindriques. 
a) Labelle allongé, indivis . . . . + -« . 335. Quekettia. 
b) Labelle onguiculé, avec plateau Be - + + . . 8336. Cohniella. 
II. B. 28. d. Oncidiinées-Trichopiliées. 
A. Labelle enroulé autour du gynostème . . . . . . . 337. Trichopilia. 
B. Labelle s'écartant de la colonne, qu'il n'embrasse deux que par 2 petites 
De nn eu Pa Re Te NE RC HE 
II. B. 28, €. Oncidiinées-Aspasiées. 
A. Lobe moyen du labelle grand, large, ou labelle indivis. 
a) Aucun repli labellaire au-dessous du plateau. . . . . . 339. Aspasia. 
b) Labelle soudé au gynostème par deux bourrelets longitudinaux seulement, 
de sorte qu'un pli en descend vers le bas. . . . . . 340. Dignathe. 
B. Lobe moyen du labelle étroit . . . . . . . . . . 341 Cochlioda. 
II. B. 28 f. Oncidiinées-Odontoglossées. 
A. Rostellum et anthère prolongés en bec: feuilles avec limbe vertical. 
a) Labelle indivis, avec deux appendices basilaires pétaloïdes. 
342. Zygostates. 
b) Labelle indivis, sans appendices. . . . . . . 343. Hofmeisterella. 
c) Labelle trilobé, sans appendices. . . . . . 344. Ornithocephalus. 
B. Rostellum et anthère non prolongés en bec, ou bec très court: feuilles nombreuses, 
graminiformes, entourant le renflement basilaire de la tige de leurs gaines ser- 
rées; croissant comme une Cymbidiée . . . . . . .345. Phymatidium. 
C. Rostellum non prolongé en bec ou à bec court; tubercules aériens non entourés 


ou à peine entourés des feuilles normales planes. 


a) Stigmate au sommet du gynostème. 
x) Base du labelle parallèle au gynostème, qui est élancé et quelquefois 


concrescent avec elle, plateau écarté . . . . 346. Odontoglossum. 
B) Base du labelle élargie, entourant presque le gynostème, gynostème court, 
appuyant ses larges ailes sur le labelle. . . . . . . 347. Abola. 


7) Labelle avec deux bourrelets longitudinaux entourant la base de la 
colonne, plateau labellaire rejeté en arrière, ne portant pas le gynos- 
RE ha fL'r. . + . . 348. Gomeza. 

ê) Labelle s’écartant de la CREER dès la base, non distinctement ongui- 


culé. 


I. Labelle semblable au sépale impair, sépales pairs complètement con- 
crescents 4 LS EE © MOIS TAN 29 PAlRREEES 
II. Labelle différent du sépale impair, sépales pairs entièrement ou par- 
tiellement libres. 

1. Sépales et pétales longs et étroits, labelle indivis ou en violon. 
350. Brassia. 
2. Sépales et pétales non prolongés, labelle très grand, indivis, lanci- 
forme à la base ou largement étalé . . . . . 351. Miltonia. 
3. Sépales et pétales non prolongés, labelle variable, la plupart du 
temps trilobé et avec verrues, formant un angle avec le court 
gynostème; 2 pollinies sphériques où ovoides. . 352. Oncidium. 
4. Sépales et pétales beaucoup plus courts que le labelle qui est 3-lobé 
ou en éventail tétralobé; 2 pollinies pyriformes ou en massue; 


limbe foliaire vertical . . . . . . . . 853. Lockhartia. 

£) Labelle écarté dès la base, longuement onguiculé. 
I. Gynostème épais, court, non onguiculé. . . 354. Cryptarrhena. 
II. Gynostème élancé, non ailé . . . . . . 855. Sigmatostalix. 


III. Gynostème large, ailé; labelle avec bourrelets longitudinaux velus. 
356. Solenidium. 


b) Stigmate à la base du gynostème . . . . . . . 857. Chytroglossa. 


II. B. 29. HUNTLEFYÉES. 


A. Tubercules aériens distincts, nus . . . . . . . . 358. Promenaea. 
B. Tubercules aériens manquants ou rudimentaires. 
a) Labelle articulé, mobile sur le pied du gynostème. 
x) Labelle indivis, sans franges; gynostème en forme de nacelle, 
I. Gynostème avec carène longitudinale sous le stigmate; 4 pollinies. 
359. Kefersteinia. 


II. Gynostème sans carène; 4 pollinies. . . 360. Chondrorrhyncha. 
III. Gynostème sans carène; 2 pollinies. . . . . 861. Cheiradenia. 
8) Labelle à 2-3 ou plusieurs lobes, bourrelet en arc non frangé; gynostème 

grêle. 


I. Bourrelet arqué, formant un plateau reposant librement en avant sur le 
labelle; labelle très brièvement onguiculé. . 362. Warscewiczella. 
II. Bourrelet arqué, massif, ne reposant pas librement sur le labelle; 


labelle nettement onguiculé . . . . . . . ,.363. Pescatorea. 

y. Gynostème en forme de nacelle concave . . . . ,. . 364. Bollea. 

à. Labelle avec bourrelet en arc frangé . . . . . . 365. Huntleya. 

b) Labelle uni à la base du gynostème, épais . . ,. . 366. Chaubardia. 


DEUxIÈME Division. — Monopodiales. 
Il. B. 30. BICHAEINÉES, 


A. Feuilles non articulées; capsule couverte d’aiguillons ou verruqueuse. 
367. Dichaea. 
B. Feuilles articulées; capsule Jisse. . . . . . . . . 368. Dichaeopsis. 
II. B. 31. SARCANTHINÉES. 
II. B, 31. 4. Sarcanthinées-Pachyphyllées. 
A. Labelle libre; 2 pollinies sur le stylet. . , . . . 369. Pachyphyllum 
B. Onglet labellaire concrescent avec les ailes du gynostème, 
a) Stylet des deux pollinies concrescent en bas, libre au-dessus, 370. Nasonia. 
b) Stylet des pollinies libre presque jusqu’à la base, , 371. Centropetalum. 


PL. XVIII. 


II. B. 31 b. Sarcanthinées-aeridées. 


A. Labelle articulé, mobile à la base du gynostème: pas de pied. 


a) Labelle avec 2 éperons basilaires. . , . . ,. . 372. Diplocentrum. 
b) Labelle sans éperon ou avec court éperon dorsal indivis, avec lobe externe 
en forme de langue. . . . |. . . 373. Renanthera. 


c) Labelle sans éperon avec prend Pre on en forme de coquille. 


374. Esmeralda. 


B. Labelle uni avec la base du gynostème épais, sans éperon. 


a) Sépales latéraux insérés seulement sur le sommet de l'ovaire: pas de pied au 
gynostème. 


a) Labelle concave à la base, comprimé latéralement à l'extrémité. 


375. Vandopsis. 


8) Labelle à extrémité non comprimée latéralement. 
I. Labelle indivis ou à petites auricules dressées à la base; stylet large; 


limbe foliaire cylindrique . . . . . . . . 376. Luisia. 
II. Labelle en forme de biscuit, avec me extrême bilobée; limbe des 
feuilles plan . . . NAT RP NME EE ITU 
III. Labelle trilobé en croix: Eabe foliaire Le . . 378. Stauropsis. 

b) Sépales latéraux décurrents sur le pied. 
a) Axe de la hampe florale aplati en bois de cerf . . 379. Polychilos. 


B) Axe de la hampe florale cylindrique. 
I. Labelle avec bourrelet sur le plateau 
II. Labelle avec bourrelet sur l'onglet . 
C. Labelle uni avec la base du gynostème épais, éperonné. 


a) Sépales latéraux insérés seulement sur le bord de l'ovaire; pas de pied. 
x) Pollinies sur un même stylet. 


380. Phalaenopsis. 
381. Doritis. 


I. Eperon divisé intérieurement par une lamelle longitudinale. 


382. Sarcanthus. 
II. Embouchure de l'éperon fermée par une lamelle transversale: masse 


adhésive arrondie 383. Cleisostoma. 
III. Entrée de l'éperon rétrécie par une dilatation transversale: masse 


adhésive en fer à cheval + + + + . . 884. Echioglossum. 
IV. Éperon sans lameile interne et à gorge non rétrécie par un épaississe- 


ment. 
1. Quatre pollinies distinctes, sphériques . 385. Microsaccus. 


2. Deux pollinies entièrement unies, ou quatre en deux corps sphériques 
ou ellipsoïdes. 


* Stylet filiforme. 
+ Gynostème avec 2 appendices dressés à la base. 


386. Schænorchis. 


++ Gynostème sans appendices. 
À Labelle tourné en bas; inflorescence en grappe très florifère. 
387. Saccolabium. 
AA Labelle tourné en bas; une seule fleur . 388. Ceratochilus. 
AAA Labelle tourné en haut; inflorescence fragile. 389. Acampe. 
** Stylet des pollinies étroit, triangulaire, avec un prolongement 
entre les deux lobes qui portent les pollinies . 390. Uncifera. 
*#* Stylet élargi au-dessus ou partout, sans prolongement. 
+ Éperon court et large. Pro =. = 091. Vanda. 
++ Éperon long et mince. + «+ . . . 392. Angraecum. 
B) Pollinies sur un stylet fendu en deux 393. Aerangis. 


18 


y) Pollinies sur deux stylets distincts ou seulement unis par la masse adhésive, 
I. Pollinies attachées à la surface par deux pièces membraneuses allongées. 
1. Des feuilles; fleurs étalées, planes; labelle entier. 
394. Macroplectrum. 
2. Sans feuilles: fleurs non plane: labelle trilobé. 395. Polyrrhiza. 
II. Stylet mince, sans écaille sur lui ou sur la masse adhésive. 
1. Enveloppes florales rapprochées; stylet court. 
396. Campylocentrum. 
2. Enveloppes florales dressées ou écartées: lobes latéraux du labelle 
enroulés autour du gynostème, éperon court, conique. 397. Oeonia. 
3. Enveloppes florales étalées; éperon long et mince. 
* Gynostème rejeté en arrière contre le sépale médian. 
398. Listrostachys. 
#*# Gynostème droit. . . . . . . . . 399. Mystacidium. 
III. Masses polliniques couvertes en dessus par une écaille, pétales lobés. 
400. Cryptopus. 
IV. Stylet avec papilles: plante sans feuilles . . 401. Dendrophylax. 
b) Sépales latéraux décurrents sur le pied du gynostème, formant menton. 
z) Éperon épais, sur la pointe du menton, dirigé en dehors. 
I. Tige excessivement courte, dépourvue de feuilles ou avec quelques 
petites écailles linéaires. 
1. Pied du gynostème faiblement développé. 402. Taeniophyllum. 
2. Pied du gynostème long; pétales et sépales latéraux totalement 
insérés sur lui. .. . : . . : … . . 403: Chiloschista: 
IT. Tiges normales, avec feuilles. 
1. Éperon courbé en dessus contre le plateau labellaire. , 
* Gynostème court; pollinies sur un long stylet. . 404. Aerides. 
** Gynostème élancé; pollinies sur des lobes spéciaux du stylet. 
405. Grosourdya. 
2. Éperon droit ou courbé en arrière. 
* Labelle presque en forme de sabot, plateau trilobé, à lobe médian 
charnu; rostellum court. . . . . . . 406. Sarcochilus. 
** Labelle 3-lobé; rostellum avec long bec . . 407. Camarotis. 
#K# Labelle indivis, plan . . . . . . 408. Rhynchostylis-. 
B) Éperon plan, s'élevant au-dessus du menton, plateau labellaire lisse. 
. 409. Aeranthus. 
y) Éperon ne s'élevant pas au-dessus du menton, plateau labellaire avec 
appendices velus. . . . . . . . , . . 410. Trichoglottis. 


DEUXIÈME PARTIE. 


L'ORCHIDÉE, SON UTILITÉ ET SA PATRIE. 


GÉHAPTERE TE 


UTILITÉ DES ORCHIDÉES. — USAGES DIVERS. — 
LA VANILLE. — FLEURS COUPÉES. 


I. USAGES INDUSTRIELS. — Martius, parlant de ses plantes 
de prédilection, disait avec raison, qu’un volume de mille pages 
ne suffñrait pas à décrire tous les usages auxquels se prêtent les 
Palmiers. 

Pareil éloge ne peut être fait des Orchidées. 

Comme valeur industrielle, leurs pseudo-bulbes et leurs tiges 
n’en ont guère. Seuls les enfants du Honduras utilisent les 
pseudo-bulbes en formes de cornes, creux et fistuleux, du 
Schomburgkia tibicinis; ils en font des trompettes, mais quel que 
soit le bruit qu’ils en tirent, il est certain que si cette Orchidée 
ne produisait pas une admirable fleur (fig. 203)(1), la notoriété 


(1) Les divisions du périanthe sont oblongues, obtuses, ondulées, crispées 
(surtout les trois divisions inférieures); leur couleur rouge-brun est moins 
foncée à la base. Le labelle est oblong, trilobé avec les deux lobes latéraux 
larges et étalés. La teinte générale est blanc crème ou jaune-orangé pâle; il 
est parcouru par un réseau de veines cramoisies; les bords sont lavés et veinés 
de violet et le centre du lobe médian est teinté de jaune. Le gynostème est 
épais, blanc, pointillé de pourpre. 


— 276 — 


du Schomburgkhia tibicinis n'aurait jamais dépassé le territoire 
de sa patrie. 

De toutes les Orchidées, la Vanille (fig. 201) seule a une cer- 
taine importance commerciale à raison de son fruit (fig. 202). 


II. UsAGESs SACRÉS. — Les Orchidées doivent leur popularité 
surtout à leurs fleurs. Il est consolant en cette fin de siècle 
si utilitaire, de voir l’homme se passionner encore pour ce rayon 
de poésie que la fleur apporte. Source des plus délicates jouis- 
sances, les fleurs parfumées ou colorées des Orchidées s’impo- 
sent même à l’admiration des peuplades primitives. Les Dayaks, 
riverains du fleuve Amboan, mêlent des fleurs du Cælogyne 
asperata au riz des semailles dans une cérémonie d’un caractère 
étrange. Charles André la décrit en ces termes : « Les Dayaks 
étaient occupés à ce 
moment à trier le riz 


VI pour les semailles; hom- 
EL mes, femmes, enfants, 


étaient réunis dans le 
Kampong et  travail- 
laient avec ardeur, car 
les graines devaient être 
semées le lendemain. 
Ils m’accueillirent bien 
néanmoins, et je m'in- 


Fig. 201. — Vanilla planifolia AnDr. 


stallai pour prendre le repos dont j'avais grand besoin. 

« Vers dix heures du soir, un vacarme affreux me réveilla; il 
semblait qu’une foule fût assemblée devant la maison et s’efforçât 
de faire le plus grand bruit possible; au bout de quelques instants, 
je vis apparaître une dizaine de vieilles femmes qui frappaient sur 
d'énormes gongs en forme de casseroles ; elles étaient suivies de 
quinze ou vingt jeunes filles portant dans leurs mains de gros 
bouquets de Cæœlogyne asperata et ayant dans les cheveux des 
guirlandes de ces fleurs. Cette singulière procession entra dans 
l’habitation, sans cesser un instant son assourdissant tapage; on 
plaça devant les femmes des caisses remplies de riz et les jeunes 
filles déposèrent leurs bouquets à gauche et les grappes qui 


A 


ornaient leur tête à droite. Deux fillettes de cinq à six ans 


s’avancèrent alors et ramassèrent ces fleurs; puis elles les 
répandirent, celles des bouquets dans les caisses qui contenaient 
les graines et les autres devant ces caisses. La musique se tut; la 


cérémonie paraissait terminée. Je pus alors me 
renseigner auprès des Dayaks sur cette pompe 
qui m'intriguait fort et voici ce que j'appris. 
Dans ces populations naïves qui font toujours 
volontiers des Dieux, des objets naturels qui 
leur sont utiles, les semailles comme la moisson 
sont une des grandes fêtes de l’année, car 
l'existence de la famille en dépend. Or, la joie 
était d'autant plus grande ce jour là, que les 
Cælogyne asperata avaient produit des fleurs en 
abondance, ce qui, selon la croyance des Dayaks, 
est le présage d'une bonne récolte ». 


III. NoMS POPULAIRES. — Autant que les 
Indiens, les peuples catholiques furent de tout 
temps enthousiastes de ces fleurs aux périan- 
thes satinés. Ils consacrèrent à Dieu et aux 
Saints grand nombre d’Orchidées. Les noms 
populaires de ces fleurs dans les colonies espa- 
gnoles en sont la preuve. Ainsi le Laelia acu- 
minata s'appelle au Mexique Flor de fesu. 
D'autres sont dédiées au Saint dont la fête 
correspond à la date de leur floraison : telle est 
à Merida la Fleur de San José : Epidendrum 
cochlidium : au Guatemala la Fleur de Saint 
Sébastien : Catileya Skinneri, ou la Fleur de 
Isabal : Epidendrum (Barkeria) spectabile. Aux 
environs de Panama, le Lalia autumnalis s'ap- 
pelle Fleur de tous les Saints. Les longues pani- 


cules de fleurs parfumées, tachetées de brun, de Fig. 202. — Fruit 


l’Oncidium tigrinum sont au Mexique spéciale- 
ment consacrées à un usage funéraire : Flor 


déhiscent du Va- 
nilla planifolia 


ANDR. 


de los muertos. Enfin la fleur du Sobralia dichotoma paraît si 
belle aux Péruviens qu’ils l’appellent : Fleur du Paradis ! 


De tous temps et dans tous les pays, la fleur coupée de l’Orchi- 


— 278 — 


dée servit à la parure des femmes. « Dans l’île de Ternate, écrit 
Rumphius (1), les dames, surtout les épouses, les sœurs et les 
filles de rois (que les Malais appellent toutes du nom de Putri et 
les habitants des Moluques, du nom de Boki), s’approprient les 
fleurs d’Angræcum scripium avec tant d’exclusivisme, qu’elles 
feraient un sanglant affront à la femme du peuple, et plus 
encore à l’esclave, qui oserait en porter sur la tête. Les femmes 
de sang royal les font cueillir dans les bois, pour elles seules, 
afin d'en parer leurs chevelures. Quand Ia nature ne fait croître 
ces fleurs que sur des sites aussi élevés, elle indique clairement, 
disent les orgueilleuses Indiennes, que ces Orchidées n’ont pas 
été créées pour des gens de basse condition. De là, sans doute 
leur nom populaire de Fleurs de princesse ». 

Certaines Orchidées doivent leur nom populaire à une 
mimique caractéristique(z). Nous avons déjà cité un certain 
nombre de fleurs mimes(3). Devons-nous rappeler les curieuses 
fleurs du Peristeria elata dont la forme rappelle une petite 
colombe et que les populations de l’Isthme de Panama appè- 
lent Flor del Espiritu Santo? Les fleurs de l’Epidendrum macro- 
chilum et celles du Trigonidium Eyertonianum sont dénommées 
Boca del Dragon, la première par les indigènes de Guatemala, 
la seconde par ceux du Honduras. Le labelle en goître du 
Cypripedium 1rapeanum lui a valu au Mexique le nom de Fleur 
Pélican; peut-être est-ce à l’apparence coriacée de leur labelle 
que certains Cypripedium nord-américains (C. pubescens et spec- 
tabile) doivent leur nom populaire de Fleur moccasin? La 
forme spéciale linéaire et retombante du sépale supérieur 
des Masdevallia Lindeni et Harryana les a fait désigner sous 
le nom très pittoresque de Banderita (petite bannière). Comme 
le Muguet dans nos climats tempérés, deux des plus jolies 
Orchidées tropicales : Laelia majalis et Cattleya Mossiae portent 
l’une à San Bartholo, l’autre au Vénézuéla, le nom charmant 
de Flor di Majo. Quelques-unes reçoivent dans le langage 


(1) Herbarium Amboinense, vol. VI, p. 97. 

(2) La longueur de ses feuilles fait donner à l'Oncidium Lanceanum son 
nom populaire d’Oreille d'âne (Orelha do burro). 

(3) Première partie. Chapitre IX, $ IV, p. 173. 


a 1 Non 


populaire des noms plus compliqués : ceux-ci ne passeront 
pas, croyons-nous, dans le langage scientifique ou horticole 
moderne. Nos jardiniers et nos botanistes préféreront tou- 
jours appeler avec La Llave et Lexarza Maxillaria liliacea ou 
avec Lindley Govenia liliacea, cette Orchidée guatémalienne dont 
Hernandez nous rapporte le nom vernaculaire : Zztactepetza- 
cuxachitl Scohuezo ! 

Les noms populaires ne sont point tous aussi rocailleux. A 
toutes les époques, les peuplades américaines baptisèrent « Filles 
de l’air » les belles Orchidées épiphytes tropicales, et ce nom, le 
plus répandu de tous, est plus vrai, plus pittoresque et plus 


Fig. 203. — Schomburgkia tibicinis Bart. 


poétique assurément que celui donné si dédaigneusement à 
ces fleurs charmantes par un écrivain de génie, Michelet, qui 
les appelait : « Filles de la pourriture. » 


IV. L’'ORCHIDÉE ET LE DESSIN DÉCORATIF. — Si la fleur de 
l’Orchidée a peu d'usages industriels, elle tente et séduit l'ima- 
gination des artistes par sa forme et par son coloris. 

La fleur du Sfanhopea tigrina, aux pétales marqués d’une 


— 2600 — 


manière étrange, servit d’emblème à la célèbre Académie des 
Lyncei de Rome. Dessinée par Hernandez(i), elle devint, dès 
le XVII: siècle, un intéressant motif ornemental (2). 


V. L'ORCHIDÉE ET LE BLASON. — Comme le Chrysanthème 
au Japon, l’Orchidée a envahi le blason d’un état américain : le 
Cypripedium pubescens, la « Moccasin flower » a été adoptée 
comme fleur nationale par le Minnesota. Nous ignorons si la 
science héraldique attache à cette plante un sens spécial, et 
nous ne croyons pas que ce soit aux poils de ses feuilles, dont 
M. D. Mac Dougal(3) a révélé les curieuses propriétés irri- 
tantes, qu’elle doit d’avoir été choisie pour orner le blason d’un 
des états les plus pacifiques de la grande république américaine. 
Le Cypripedium pubescens serait-il peut-être une figure héraldique 
nouvelle signifiant : « Noli me tangere » ? 


VI. UTILISATION DU SUC DE CERTAINES ORCHIDÉES. — Si nous 
passons à l'examen des Orchidées donnant des produits utiles à 
l’homme, nous ne rangerons évidemment pas au nombre de 
celles-ci le Cyrtopodium dont le suc vénéneux sert à empoisonner, 
dit-on, les flèches des Indiens. Nous devons signaler ici celles 
dont la sève présente un intérêt économique. Les Indiens du 
Pérou emploient les pseudo-bulbes des Cattleya, des Mormodes, 
des Catasetum et d’autres grandes Orchidées; ils en font une 
colle forte. D’autres Indiens, au dire de Nôtzli, les écrasent et 
les mélangent avec de la chaux pour blanchir la façade et 
l'intérieur des habitations. 

Les Cyrtopodium, les Catasetum, produisent une matière 
visqueuse analogue à la glu; celle contenue dans les bulbes de 
l'Aplectrum hyemale sert aux État-Unis à raccomoder la vaisselle 
(racines-mastic). Quelques espèces qui renferment, dans leurs 
pseudo-bulbes, des matières résineuses, agissent comme la 
colophane sur les cordes frappées par les archets. Une Orchidée 
japonaise, Bletilla hyacinthina Rchb. f., fournit aux Japonais un 
ciment végétal employé pour fixer les silhouettes en fils métal- 


(1x) Rerum mexicanarum Novae Hispaniae Thesaurus, p. 266. 
(2) Ecphrasis de Colonna, 1616. 
(3) Minnesota botanical studies, n° 9, p. 32; HARRIS et SMITH, 1894. 


— 281 — 


liques qui forment sur les vases en cuivre les compartiments des 
émaux cloisonnés. 


VII. PRODUITS ALIMENTAIRES ET MÉDICAUX. — Quelques Orchi- 
dées servent à l'alimentation : la plus importante est la Vanille 
(fig. 201) dont nous parlerons tantôt d'une manière spéciale; le 
Gastrodia sesamoides a des tubercules comestibles, connus sous le 


Fig. 204. — Schlimia trifida, Ru. 


nom de pommes de terre de Tasmanie. Au Pérou, le Maxillaria 
bicolor, au Mexique, divers Lælia sont recherchés à raison du 
liquide insipide, mais fébrifuge, paraît-il, que renferment leurs 
tissus. 

Le Bletia verecunda renferme dans ses parties souterraines, 


un principe amer, un jus piquant qui, échauffant le palais, 


— 282 — 


produit une certaine sensation de chaleur, elle y laisse une amer- 
tume qui favorise la digestion. On cite encore comme étant uti- 
lisés les pseudobulbes du Lissochilus Bouliawongo, qui, d'après 
le naturaliste Ed. Jardin, servent à fabriquer, au Gabon, une 
tisane souveraine contre les coliques; le Spiranthes diuretica 
est employé au Chili comme diurétique; le Cypripedium pubes- 
cens est antispasmodique comme la Valériane; l’Epipactis lati- 
folia émet des racines recherchées comme remède préventif, 
antigoutteux, etc., etc. 

Les bulbes souterrains d'un nombre fort considérable d'Ophry- 
dinées (Orchis Morio L., O. mascula L., O. ustulata L., O. latifolia 
Le, ©. militaris L., O.:maculata L., etc.) sont recherches 
par les droguistes à raison de leur mucilage, connue sous le nom 
de Salep(1). Substance alimentaire très nutritive, les médicastres 
anciens lui reconnaissaient des propriétés fort surprenantes. 
Dalechamps, dans son Histoire des plantes (2), a présenté le résumé 
des vertus miraculeuses et des merveilleuses qualités reconnues 
par Fuchs, de l’Écluse, Dodoëns, De Lobel, Matthiole, Bauhin, 
aux tubercules didymes des Orchis. Cette croyance était un legs du 
passé. Dioscoride, Pline, les prêtresses thessaliennes ajoutaient 
foi entière à la puissance aphrodisiaque de ces bulbes. 

Les médecins contemporains de Charles-Quint n’avaient pas 
encore rompu avec ces préjugés. Beaucoup y croyaient aveugle- 
ment. D’après eux, l’homme qui mangeait le tubercule dur et 
plein de l’Ophrys, avait infailliblement un fils; comme la femme 
mangeant le tubercule ayant fleuri dans l’année, c’est-à-dire 
ratatiné et flétri, devenait mère d’une fille. On comprend qu'étant 
données ces croyances populaires, admises même par des esprits 
cultivés, les bulbes d'Orchis formèrent, pendant le moyen âge et 
une partie des temps modernes, la base des philtres et des boïs- 
sons aphrodisiaques. 

Ces croyances persistèrent longtemps. Un savant professeur 
de Strasbourg, mort en 1701, rapporte au sujet de l'Himantoglos- 
sum hircinum un usage alsacien que nous nous bornerons à citer 
en latin : « Sunt ex mulierculis nostratibus rusticis, quæ testi- 


(1) Le Salep de l’Inde est, d’après Royle, produit par un Eulophia. 
(2) T. I, page 421-440. 


— 283 — 


culos turgidos hujus orchidis, in taleolas scissos et cum ovis 
frixos, viris suis exhibent ad augendam virilitatem. » Nous 
ignorons, avec Kirschleger, auteur d’uneexcellente flore d'Alsace, 
si l’omelette aux pseudo-bulbes d’'Orchidées figure encore dans le 
manuel des recettes culinaires des paysannes alsaciennes. 

Les bulbes desséchés des Orchis destitués de leur valeur 
surnaturelle ne trouveraient plus d'acheteurs, s’ils ne servaient à 
la préparation du Salep, aliment très reconstituant et de diges- 
tion facile. Débarrassés de leurs racines, lavés à l’eau froide, 
égouttés, enfilés en chapelets, les bulbes d'Orchis sont passés 
d'abord à l'eau bouillante et débarrassés de la pellicule qui les 
recouvre; on les fait bouillir à grande eau, jusqu’au moment 
où quelques bulbes commencent à se résoudre en une pâte 
mucilagineuse, qu’on sèche au soleil. 

Ces bulbes contenant une certaine quantité de fécule, le salep 
convient aux bouillies alimentaires. On obtient la poudre par la 
trituration des bulbes, macérés dans l’eau froide, pendant douze 
heures. En Orient et en Europe, le salep pris, soit seul, soit avec 
du chocolat, du lait ou du bouillon, sous la forme de poudre ou de 
gelée, est employé comme aliment analeptique ou comme mucilagi- 
neux pour combattre les effets de la diarrhée, de la dyssenterie, des 
toux sèches et inflammatoires, etc. Dans les villes de la Grèce 
et de la Turquie, des Albanais épiriotes vendent dans les rues 
une boisson, froide ou chaude, composée d’eau dans laquelle on 
délaie la farine de ces tubercules cuite avec du miel. On y mêle 
un peu de poudre de gingembre en guise d'épices. Il semble 
toutefois que, les progrès de l’industrie développant l’ingénio- 
sité des falsificateurs, le miel exquis de l’'Hymette est remplacé 
aujourd’hui par une vulgaire décoction de figues sèches. 

A la Guyane, l’Epidendrum bifidum Aubl. jouit d’une certaine 
vogue médicinale. Le docteur Schomburgk rapporte que le suc de 
cette plante est un purgatif, un anthelmintique et un diurétique. 
A Saint-Domingue, une Vanille (Vanilla claviculata Sw.) est 
appelée « liane à blessure », son suc servant à guérir les plaies 
récentes. 


VIII. USAGE DES FEUILLES. — Les feuilles de certaines 
Orchidées contiennent un principe odorant, la coumarine qu'on 


— 284 — 


retrouve du reste dans la Fève de Tonka et dans plusieurs de nos 
plantes indigènes telles que la Flouve, les Mélilots, l’Aspérule. 
Les feuilles de certaines espèces servent à la préparation de thés: 
celles de l’Angræcum fragrans fournissent à Madagascar, le 
thé Faham dont les infusions sont, dit-on, stomachiques. Ces 
feuilles séchées émettent un parfum très doux et très délicat, 
celui de la vanille et de la Fève de Tonka. Il en est de même, 
paraît-il, des feuilles séchées et légèrement fermentées de 
l'Orchis militaris, et surtout de celles de l’Aceras anthropophora 


(Ag. 49). 


IX. LA VANILLE. — Au point de vue économique, la plus 
importante de toutes les Orchidées est la Vanille (Vanilla plani- 
folia Andrews) (fig. 201), l’aromate par excellence des crèmes, 
des glaces, des sorbets et du chocolat. Ce ne sont toutefois ni les 
racines, ni les feuilles, ni les bulbes qui sont recherchés, c’est le 
fruit aromatique, brun-noirâtre, couvert d’une multitude de petits 
cristaux (fig. 202), qui fait l’objet du plus actif commerce(1). Ce 
fruit allongé, presque siliquiforme, bivalve, pulpeux à l’intérieur, 
c’est la Vanille du commerce. 

Autrefois, la Vanille passait pour nervine, céphalique et exhi- 
larante. Aujourd’hui, on reconnaît qu’elle aide à la digestion : 
aussi les Anglais la regardent-ils comme un spécifique souverain 
pour chasser les affections mélancoliques et dissiper les humeurs 
noires et le spleen. On s’en sert parfois en médecine comme 
stimulant du système circulatoire. Prise à haute dose, la Vanille 
constitue un aphrodisiaque. 

Quelle est la patrie de cette plante? 

Le Mexique oriental passe aux yeux de quelques botanistes 
pour avoir été l’habitat primitif de cette plante. Ce pays est 
encore aujourd’hui le centre de production le plus important, si 
pas en quantité, assurément comme qualité. Partout la plante 
croît facilement sous les tropiques, et partout elle est cultivée. 

La Vanille est une Orchidée sarmenteuse, garnie d'assez 
grandes feuilles elliptiques, lancéolées, charnues (fig. 201). Elle 


(1) Ces gousses semblent avoir été importées en Europe dès la découverte 
du Nouveau-Monde, et — qui le croirait? — dix ans avant l'introduction du 
chocolat (1520). 


— 285 — 


émet de longues racines aériennes; quelques unes atteignent et 
dépassent six mètres. A l’aisselle des feuilles, naissent de courts, 


—— * RSS 


Fig. 205. — Paphiopedium Harrisianum (Rcus. f.) 
mais robustes racèmes de fleurs jaune-verdâtre à périanthe 
presque régulier, à labelle roulé en cornet. Les ovaires, d’abord 
redressés, deviennent pendants après la fécondation et se trans- 


— 286 — 


forment en de longs fruits (fig. 202) odorants, d’un brun noirâtre, 
ridés dans le sens de la longueur, rétrécis aux deux extrémités, 
un peu recourbés à la base. Tel est l’aspect des gousses de 
vanille du commerce; leur longeur varie de douze à vingt-quatre 
centimètres; leur largeur est de un centimètre au plus. Les 
principes aromatiques sont contenus dans de longues papilles 
cylindriques qui, partant de la face interne des carpelles, 
s’avancent entre les placentas dans la cavité du fruit. 

La Vanille renferme deux substances aromatiques : l'une 
huileuse, qui donne aux fruits un lustre gras; l’autre cristalline, 
la vanilline(ï). C'est cette dernière qui produit ces efflorescences 
blanches, ce givre cristallin, brillant, recouvrant le fruit, surtout 
celui de la Vanille lec ou givrée. 

La culture de la Vanille est très importante : la plus estimée 
est celle du Mexique; la moins recherchée vient des îles Sey- 
chelles. Le prix varie de 300 francs à 30 francs le kilogramme. 
Dans l’Inde occidentale, à Java, dans les îles de la Réunion et 
de Maurice, la culture de la Vanille s’est répandue au point de ne 
plus être rémunératrice que lorsqu'elle est liée à la culture du 
Cacaoyer, dont les troncs lui servent de support. En 1892, 
l’île de la Réunion exportait près de 96 tonnes de vanille, pour 
une valeur de plus de trois millions de francs! 

Dans la culture industrielle, on multiplie le Vaniller en se 
servant de boutures. Les jeunes plantes produisent des fruits 
au bout de trois ans, et donnent une récolte annuelle de 
cinquante gousses pendant trente à quarante ans. On cueille les 
gousses avant leur complète maturité; on les sèche au soleil ou 
au feu de bois; on les réunit en bottes et on les livre en cet 
état au commerce d'exportation. 

La Vanille a une valeur d’autant plus grande (Vanille givrée) 
que les cristaux blancs, couvrant l'enveloppe extérieure du 
fruit, sont plus nombreux. Aussi, les falsificateurs, race sans 
pitié, cherchent-ils à donner artificiellement ce givre aux fruits 
de la Vanalle Simarona ou batardes, en saupoudrant ces gousses 


(1) La Vanilline est soluble dans l’eau bouillante. Elle fond à 780 C. et rougit 
le papier de tournesol. 


— 287 — 


plus petites et moins brunes de petits cristaux pris sur les 
gousses de Vanille lec. 

Outre la Vanille lec provenant de la plante cultivée (Vanilla 
planifolia), on trouve encore dans le commerce les fruits du 
Vanilla pompona (Vanillon de la Guyane). Moins longues et plus 


= — | 


Fig. 206. — Saccolabium Hendersonianum Res. f. 


larges que les précédentes, les gousses, presque toujours ouvertes, 
émettent une odeur très forte, mais moins agréable. C'est la 
moins estimée des Vanilles. 

D’autres fruits d'Orchidées sont aromatiques : ceux du Selenipe- 
dium Chica Rchb. f. portent à Panama le nom de Chica ou 


— 288 — 


Vanilla en arbol, et y sont employées en guise de Vanille; ceux 
du Selenipedium Isabelianum sont, d'après Barbosa Rodriguez, 
aussi aromatiques que le groupe des Vanilles, ce qui leur vaut, 
au Brésil, le nom populaire de Baunilhasinha ou petite vanille. 


X. L’ORCHIDÉE DANS LES SALONS. — Comme nos lecteurs 
s’en aperçoivent, le rôle économique de la famille orchidéenne 
est très restreint. Aussi n'est-ce point à raison de leurs pro- 
priétés médicinales ou culinaires qu’on les recherche. Si elles 
sont peu utiles, leurs fleurs sont pleines de charmes ! La femme 
est de nos jours en effet loin de partager l’avis de ce roman- 
cier(1), auquel « aucune fleur d’Orchidée ne semblait réelle; 
l’'étoffe, le papier, la porcelaine paraissant avoir été prêtées 
par l’homme à la nature pour lui permettre de créer des mon- 
stres. » Elle apprécie, au contraire, non-seulement la rare 
beauté de plantes émettant, comme les Aerides (fig. 210), 
les Rhynchostylis (fig. 235) et les Saccolabium (fig. 206), à 
droite et à gauche de leurs longues tiges, garnies depuis le bas 
de deux rangées de belles feuilles vertes, leurs vigoureux 
racèmes, longues grappes serrées de fleurs, ravissantes de 
fraîcheur et de grâce. Elle admire volontiers ces admirables 
spécimens de l'art horticole, ces Caœlogyne cristata (fig. 207) 
dont la verdure disparaît sous des centaines de racèmes fleuris; 
ces belles potées de Cypripédinées (fig. 260) aux périanthes 
érigés, brillants et persistants, ou d’Odontoglossum (fig. 265) 
dont les feuilles sont moins nombreuses que les fleurs. La femme 
‘aime surtout les fleurs de certaines Orchidées pour elles-mêmes, 
à raison de l'étrangeté de leur forme, comme certains Angraecum 
(fig. 18 et 140), de la durée de leur périanthe, comme les Cypri- 
pédinées, de la richesse de leur coloris, comme les Dendrobium, 
les Phalaenopsis, les Odontoglossum, les Oncidium, etc. etc., 
ou de la délicatesse de leur coloration, si chaude et si vibrante 
dans les Catileya (fig. 36, 37, 119, 120, 190, 191, 245, 246, 
247, 274) et les Laelia (fig. 33, 195, 240). 

Un grand nombre d’espèces et de variétés brillantes peuvent, 
sans périr, orner nos salons pendant toute la durée de leur 


(1) J.-K. Huysmans. 


PL. XIX. 


260 — 


floraison : tels sont les Cypripédinées, Paphiopedium insigne 
(fig. 260), villosum (fig. 74), et les innombrables hybrides des 
groupes Harrisianum (fig. 245) et œnanthum (fig. 251) etc., les 
Odontoglossum Rossi, maculaium, nebulosum (fig. 242), grande, 
Insleayi, crispum, etc., les Cattleya labiata et ses variétés Mossie, 
Trianæ, Warneri, etc., les Lælia purpurata, les Dendrobium nobile, 
Wardi, etc., presque tous les Epidendrum, \' Ada aurantiaca, les 
Anguloa Clowesii et Ruckeri, les Brassia verrucosa, les Calanthe 
veratrifolia, les Cœlogyne Massangeana et cristata, les Odontoglos- 
sum Roezlianum et roseum, les Cymbidium aloïfolium, Lowi, sinense, 
les Lycaste aromatica, Deppei, Skinneri, etc., tous les Masdevallia 
et Maxillaria, les Miltonia spectabilis, Clowesti, cuneata, candida, 
un grand nombre d'Oncidium (O. aurosum, concolor, crispum, 
Papilio, Kramerianum, pubescens, sarcodes, sphacelatum, etc., etc.), 
les Phajus Tankervillae (grandifolius) et Wallichii, le Pilumna 
nobilis, le Sophronitis grandiflora, les Stanhopea, le Trichopilia 
suavis, les Zypopetalum crinitum (fig. 267) et Mackayi (fig. 273). 

Dans toute décoration florale, on admirera les larges et belles 
touffes aux feuilles vertes rubanées desquelles émergent soit les 
fleurs si caractéristiques du Paphiopedium insigne (fig. 260), soit 
les hampes multiflores du Zygopetalum crinitum (fig. 267). Ces 
grandes plantes pour être admises dans les salons, doivent 
présenter, à côté d’une floraison abondante et de certaine durée, 
un feuillage sain, un aspect vigoureux et un port robuste. Il 
en est de même de ces belles touffes d’Odontoglossum ou de 
Caælogyne cristata (fig. 207) dont les racèmes aux fleurs blanches 
maculées d’or sont admirables par leurs entrelacements et leurs 
ondoiements d’une harmonie et d’une mollesse charmantes. 

Les femmes, aimant la plante pour elle-même, furent de 
tous temps les protectrices de ces belles collections d’Orchidées, 
si parfaitement choisies, moins nombreuses peut-être en genres 
cultivés aujourd’hui que vers le milieu de ce siècle(1). Les 


(1) En 1855, la collection du sénateur Jenisch à Flottbeck, près de Ham- 
bourg, renfermait 144 genres et plus de 1,026 espèces. Dans ces cultures, 
dirigées par F. B. Kramer, il y avait 46 espèces ou variétés de Cattleya, 
11 espèces de Coryanthes, 60 de Dendrobium, 92 d’Oncidium, etc. etc. La 
collection de G. W. Schiller, de Hambourg, dont le catalogue fut fait à la 


19 


autres ont été les gracieuses fées, au pouvoir magique desquelles 
nous devons la vogue actuelle du commerce des fleurs d'Orchidées. 


XI. DE LA VALEUR COMMERCIALE DES FLEURS. — Le rôle de 
la mode dans l'appréciation de la valeur relative des Orchidées, 
ne doit pas être perdu de vue. Les orchidophiles éprouvent le 
sort de tous les amateurs enthousiastes; ils ont des caprices irré- 
fléchis, et ces caprices deviennent bientôt des lois sévères, impé- 
rieuses. Comme cet amateur de tulipes broyant sous sa botte un 
oignon d’une valeur incontestable, parce que la fleur n’était pas 
absolument parfaite, certains orchidophiles rejetteront les varié- 
tés, quelque belles qu’elles soient, parce qu'elles n'ont pas le 
nombre de taches, de mouches, placées là où la mode l'exige. 
C’est ainsi que nous voyons discréditer les charmantes variétés 
d'Odontoglossum crispum à fleurs étoilées, souvent si jolies avec 
leurs taches et leurs marbrures (O0. Andersonianum, Ruckeria- 
num) etc., et rechercher avidement des variétés à fleurs arron- 
dies, plus larges, plus lourdes, ... mais beaucoup plus chères, 
et souvent moins élégantes. Qu’elles se distinguent par la 
pureté de leur blancheur, leur coloris rosé, violacé ou jaune, 
leurs macules d’un brun plus ou moins foncé, à notre avis, toutes 
les variétés sont belles, mais les plus recherchées devraient 
être toujours, quels que soient leur coloris ou leur panachure, 
les fleurs amples, à forme bien remplie, aux pétales larges et 
bien développés. Il faut que, nombreuses sur leur racème(r12à15), 
elles soient régulièrement disposées sur une longueur de 0",40 
à o",50, de manière à former une hampe florale bien garnie. 

Les Orchidées dont la fleur coupée est la plus recherchée, sont 
les Odontoglossum, les Cattleya, les Laelia et les Cypripédinées. 
Après ces groupes nombreux, les Phalaenopsis, les Dendrobium, 
les Oncidium, les Calanthe, les Vanda, les Masdevallia, l'Ada 
aurantiaca (1) (fig. 139), fournissent des espèces et des variétés 


même époque avec soin par Reichenbach fils, comprenait 800 espèces. En 
1855, le prince Demidoff cultivait, dans les serres de San Donato, plus de 
670 espèces d’Orchidées tropicales (sans les variétés). Le catalogue de ces 
Orchidées a été publié dans l’Hortus Donatensis (1855-1858) par PLANCHON. 
(1) Le Cœlogyne cristata est peu recherché pour ses fleurs coupées; elles 


sont peu résistantes. 


L'amateur désireux 


de se livrer à la culture de l’Orchidée au point de vue exclusif de 


Lé 


ociants en fleurs coupées. 


Te 
ÊS 


es des n 


Ld 


appréciées 


la production de la fleur coupée, obtiendra d’heureux résultats en 
fixant son choix sur les belles variétés de Caïtleya labiata vera 


(fig. 247), C. L. Trianae (fig. 254), Mendelli (fig. 


120), Mossiae 


Fig. 207. — Cœlogyne cristata Loz. (Spécimen de culture). 


, de Preptanthe Veitchi et Regnieri, d'Oncidium incur- 


(fig. 37), etc. 


vum, varicosum Rogersi (fig. 215), de Lycaste Skinneri (fig. 196), 


d'A da aurantiaca (fig. 139), d'Odontoglossum, de Laelia, de Masde- 


vallia, de Phalaenopsis, de Zygopetalum, etc. La culture des Odon- 


— 292 — 


toglossum crispum (Ag. 188) est l’une des plus lucratives au point 
de vue de la vente des fleurs coupées. Un jardinier nous affirmait 
avoir, par la vente de ces fleurs, obtenu certaines années trente 
pour cent du capital engagé dans une serre. 

Certaines espèces fleurissent toute l’année en serre froide; 
elles peuvent fournir d’amples moissons de fleurs coupées : les 
Odontoglossum citrosmum, crispum (fig. 189), grande, Pescatorei, 
Rossi majus (fig. 265) émettent presque en toute saison, leurs 
jolis racèmes, si gracieusement infléchis et retombants. 

En hiver, les fleurs des Orchidées sont surtout recherchées. 
En cette saison, il n'est pas de bouquet élégant, sans fleurs 
d'Orchidées. Les Orchidées à floraison hivernale sont nom- 
breuses : les plus recherchées par le commerce de la fleur 
coupée sont les Prepianthe Veztchi, les Cattleya labiata, Trianæ, 
Mendeli, Mossie, etc., les Preptanthe vestita (fig. 124) et veshta ocu- 
lata, les Dendrobium (D. Dearei, Famesianum, nobile (fig. 132), 
Wardianum, etc.), les Coelogyne, les Oncidium (O. Forbesi 
(fig. 167), Famesianum, Marshallianum, Sarcodes, tigrinum, vari- 
cosum, etc.), les Odontoglossum crispum (Alexandre) (fig. 188), 
triumphans (fig. 187) Pescatorer, etc. etc., les Laelia purpurata, 
anceps (fig. 249), Perrinii, autumnalis (fig. 195), albida etc. On cite 
également au premier rang des fleurs coupées les fleurs si déli- 
cates des Phalaenopsis amabilis (fig. 137), Stuartiana (fig. 39), 
grandiflora et Schilleriana (Ag. 54). Pour la garniture des plateaux 
de table ou des corbeilles de fleurs, on recherche les Lycaste 
Skinneri (fig. 196), surtout les variétés à fleurs blanches et les 
fleurs céroïdes éburnéennes du Macroplectrum sesquipedale ou de 
l'Eulophiella Elisabethae. Toutes les fleurs de Cypripedinées sont 
fort appréciées; employées isolément, entourées de quelques 
feuilles d’Adiantum, elles produisent toujours un charmant effet. 
La longue durée du périanthe, le pédoncule de la fleur étant 
plongé dans l’eau, est une grande cause de leur vogue. Le Fournal 
des Orchidées a publié une liste des Cypripèdes, placés dans l’ordre 
des voix recueillies lors d'un récent plébiscite. Voici le résultat 
de ce referendum horticole : Paphiopedium insigne (fig. 260), 
barbatum (fig. 12), Lawrenceanum (fig. 70), Leeanum (fig. 182), 
villosum (fig. 74), Spicerianum, nitens, Harrisianum (fig. 245), 
callosum (fig. 270), Sedeni, Dauthiert et Boxalli atratum (fig. 66). 


XII. EMBALLAGE DES FLEURS D'ORCHIDÉES. — Qu’on expédie 
des fleurs, à un actif correspondant, négociant en fleurs coupées, 


ou à une charmante correspondante ignorant les mystères du 


grand livre commercial, racèmes et fleurs expédiées réclament 
le même traitement. Quelle que soit la qualité de la personne 
à laquelle on les adresse, il faut qu’elle puisse en jouir le plus 


Fig. 208, — Angraccum fastuosum KRous, É. 


on 
longtemps possible; on ne coupera donc les fleurs qu'au moment 
de l'emballage. Devons-nous faire remarquer que toutes les fleurs 
gagnent à n’être coupées que le plus tard possible, dans tout leur 
épanouissement et si possible avant toute pollinisation ? 

Un grand nombre de fleurs (Lælia, Cattleya, Vanda), à grands 
sépales, sujettes à une rapide évaporation et à une prompte 
dessication des tissus, conservent plus longtemps toute leur 
fraîcheur, si on a soin d'envelopper l'extrémité des tiges, d’un 
petit tampon de sphagnum mouillé, main- 
tenu à la base de la tige au moyen d’un fil. 

On sait combien sont délicats les sépales 
de nombreuses Orchidées : un rien les 
froisse; il suffit qu'ils se touchent pour se 
tacher. Aussi quand on expédie ces fleurs en 
boîte, ne suffit-il pas d'écrire le mot fati- 
dique : « Fragile » sur la caisse qui les ren- 
ferme. Il est opportun de les disposer les 
unes près des autres, sans trop les serrer. 
Entre les rangées horizontales, une petite 
latte de bois ou de carton, bien fixée, forme 
séparation et empêche les fleurs d'être mé- 
langées pendant le voyage. On applique les 
tiges vers la paroi du fond, de manière que 


>. A les fleurs se trouvent vers le haut de la 
À | À boîte et ne s’applatissent pas. 

de Les fleurs sont entourées d’un papier de 
Fig. 209. — Calypso £ = : > + 

borealis. SALISB. soie fin, étalé dans la boîte et replié au dessus 

d'elles. Son but est double : maintenir les fleurs dans une immo- 
bilité relative et les préserver du froid. La boîte fermée, on 
l'enveloppe de papier fort (un papier gris goudronné suffit), afin 
d’éviter le froid, l'humidité... et la curiosité! 


XIII. VoquE DEs ORCHIDÉES. — On se lasse de bien des choses 
en horticulture. Les Œillets, les Lys, les Pensées, les Fuchsia, 
les Pelargonium et tant d’autres fleurs ont eu leur heure de gloire, 
leur période de vogue. On est frappé et attristé de voir avecquelle 
rapidité et quel dédain la mode brise ses idoles. L’Orchidée aura- 
t-elle le sort des fleurs que nous venons de citer? Nous ne le 


A — 
croyons pas, pour deux raisons : les qualités rares et réelles 
de la fleur, d’une part, l’égoïsme de l’amateur, d’autre part. Plus 
que toutes les autres familles, sauf la Rose peut-être, les Orchi- 
dées nous offrent dans leurs fleurs, la grâce parfaite, la radieuse 
beauté, l'éclat et la variété des coloris joints au charme et à 
la délicatesse des parfums. En second lieu, par suite de son 
prix relativement élevé, de sa culture spéciale, l'Orchidée ne 
tombera pas dans la liste de ce que les amateurs appellent 
dédaigneusement «< plante de marché >» par opposition aux 
« plantes de collection. » 

Parfumée ou non, la eur de l'Orchidée porte en elle une poésie 
particulière : celle de ces pays du rève ou la vie s'écoule troublante, 
charmante ou mystérieuse. Cette poésie, — nul ne peut vivre 
sans poésie au milieu de notre civilisation industrielle, — 
apporte à l’âme des impressions douces, bienfaisantes, précieu- 
ses. Le charme profond que la vue des fleurs d’Orchidées exerce 
sur toutes les créatures, ne doit-elle pas faire pardonner le peu 
de profit positif qu'elles offrent à la vie humaine? 


GHAPITRE 40 


GÉOGRAPHIE BOTANIQUE. 


I. AIRE DE DISPERSION. — Quelque étranger qu'il soit aux lois 
qui régissent la distribution géographique des végétaux, celui 
qui jette les yeux sur une mappemonde indiquant les diverses 
stations orchidéennes, est frappé de l'étendue considérable de 
l’aire de dispersion des Orchidées. On les rencontre presque 
partout où peuvent vivre des plantes phanérogames : du 72° de 
latitude Nord au 53° de latitude Sud. | 

Dans l’hémisphère boréal, le domaine orchidéen s'étend 
jusqu'aux parties les plus septentrionales de la Laponie et de la 
Sibérie ouralienne. Le Calypso borealis (fig. 209) y est le dernier 
représentant de la famille. Dans l'hémisphère austral, la flore 
orchidéenne se manifeste encore dans l'île Elizabeth et les 
îles Falkland, situées au sud de l'Amérique et dans les îles 
Campbell et Auckland, ces satellites du continent australien. 

Le domaine orchidéen austral est naturellement moins étendu 
que le domaine septentrional : chacun sait qu’à partir du 
55° lat.S., les îles de l'Océan sont dépourvues detoute végétation, 
alors que dans l'hémisphère boréal, à pareille distance du pôle 
Nord, la végétation est encore riche en espèces de haute crois- 
sance et de rapide développement. 


IT. DiFFICULTÉS QUE PRÉSENTE L’ÉTUDE DE LA GÉOGRAPHIE 
BOTANIQUE DES ORCHIDÉES. — Les renseignements inexacts 
donnés par les collecteurs, soit par ignorance, soit pour un 
motif moins excusable, leur désir de rester seuls en possession 


d’une plante, égarent souvent le botaniste le plus expérimenté. 


En pareille matière les moindres erreurs peuvent avoir de 
graves conséquences : M. W. Harrison, établi à Rio de Janeiro, 


Fig. 210. — Aerides multiflorum Roxs. 


var. Lobbii VEITcH. 


envoyait au commencement de ce siècle, des 
Orchidées à ses frères habitant Liverpool; il 
leur écrivait que « les Orchidées brésiliennes 
se rencontraient exclusivement dans les bois 4 
humides et les riches vallées, au milieu dela % 
végétation la plus luxuriante qu'on puisse 
rêver. » Ce mot exclusivement fut cause que, 
pendant des années, on cultiva les plus beaux Cattleya et Laelia 
du Brésil dans les conditions les plus défavorables à leur déve- 
loppement ! 

Une autre cause d’erreur provient des voyages que fait parfois 


— 298 — 


une plante avant d'être décrite. Le plus perspicace des orchi- 
dologues fut lui-même victime de ces indications erronées. 
Ayant reçu un Epidendrum d’un amateur anglais résidant à 
Hongkong, Lindley le décrivit sous le nom de Broughtomia chi- 
nensis (1), puis sous celui de Laeliopsis chinensis (2). Or, la plante 
n’existe pas en Chine à l’état spontané, ni même subspontané. 
Hinds la recueillit au Panama et Hoffmann au Costa Rica! Le 
souvenir de cette méprise fut enregistré, narquoisement peut- 
être, par Reichenbach qui donna à la plante son nom définitif 
d’Epidendrum nonchinense (3). 

Reichenbach ne fut-il pas lui-même victime d’erreurs sem- 
blables? N'a-t-il pas consigné dans les Annales de Walpers, 
les renseignements suivants(4) : « Epidendrum decipiens Rchb. f. 
in Bonpl. II, 282, Ocanna 4000’ « Environs de Bruxelles » Sep- 
tember, n. 092, Schlim. » Devons-nous faire remarquer qu’après 
Schlim, personne n’a plus retrouvé cet Epidendrum en Belgique 
et que M. Crépin dont l’excellente Flore est si complète, ne 
mentionne pas cette Orchidée au nombre des plantes belges ? Si 
elle vécut jadis aux environs de Bruxelles, ce dut être à Laeken, 
dans les serres du Château royal! 

La désignation vague de certains habitats rend particulière- 
ment pénible et difficile l'étude de la répartition géographique 
des 8000 espèces d'Orchidées décrites. Que signifie ce terme 
général : Indes orientales? Comment découvrir la patrie réelle 
d'une Orchidée dans une indication aussi vague. Existe-t-elle 
sur toute cette vaste surface? Habite-t-elle l'Himalaya ou 
Ceylan, l’Assam, le Thibet ou bien Singapore ? Quel renseigne- 
ment précis nous offre la qualification d'Orchidée brésilienne 
donnée à certaines Orchidées (Miltonia spectabilis, candida, 
cuneata) dont on ignore l'habitat, la date de l'introduction, le 
nom même de celui qui, le premier, en a révélé l'existence aux 
orchidophiles ? 

Cette ignorance de la station exacte des plantes n'est pas 


(1) Hook., Lond., fourn. Bot., T, p. 492. 
(2) Paxron. Flow. Gard., III, p. 156. 
(3) Wazpers. Ann., VI, p. 324. 

(4) Id. t. VI, p. 391. 


299 — 
seulement préjudiciable à la science! Le jardinier, ne connaissant 
pas les conditions normales de leur existence, ne parvient pas 
à les cultiver d'une manière judicieuse. Certaines Orchidées 
(Telipogon, Dendrobium formosum, Bensoniae, Mac Carihiae, 
Parishii, bigibbum, etc.) sont réfractaires à toute culture parce 
que nous ignorons les conditions spéciales de leurs habitat. 
N'est-ce point le même motif qui nous fait dire que la culture 
des Cattleya Acklandiae (fig. 191), C. superba, Chysis bractescens 
(fig. 162), Colax jugosus, 
Oncidium crispum, Gram- 
mangis Ellisii (fig. 112), 
Diacrium bicornutum (fig. 
152), etc., présentent les 
difficultés les plus insur- 
montables ? 


III. RÉPARTITION DES 
ORCHIDÉES ÉPIPHYTES ET 
TERRICOLES. — Au début 
de cette étude, il convient 
de rappeler un principe 
fondamental de la géobo- 
tanique : À mesure que 
l’habitat d’une plante pha- 
nérogamme se rapproche (fl 
des régions froides, sa 


peseon er DS Fig. 211. — Cœlogyne (Neogyne) Gardneriana 
courte, plus faible, plus LDL. 

exiguë. L'appareil aérien diminue de taille et de force: l’appareil 
souterrain s’accroît au contraire en dimension et en puissance. 
Aussi, dans les zones tempérée et froide, les Orchidées sont- 
elles toutes terricoles, l'importance des racines s'accroît en 
proportion de la caducité ou de l’atténuation des parties 
aériennes. Dans les climats à température plus élevée, particu- 
lièrement dans les zones chaudes et torrides, les Orchidées sont 
pseudo-épiphytes; la dimension des parties aériennes (racines, 
feuilles et fleurs) étant toujours de beaucoup supérieure à celle 
des parties souterraines, qui parfois même font absolument 


défaut. Les deux forces qui entraînent le développement du 
végétal, la lumière et l’humidité, agissent en sens contraire : 
l’une convie les végétaux à s’éloigner de la terre, la seconde les 
en rapproche : car le plus souvent, l’eau est contenue dans le 
sol. Dans les contrées où la lumière est vive et les précipitations 
aqueuses très abondantes, — comme la région des Tropiques, — 
certaines plantes peuvent vivre éloignées du sol. Nous ne retrou- 
vons ces conditions exceptionnelles que dans le sud du Chili et 
dans la Nouvelle-Zélande. L'existence d’Orchidées épiphytes 
dans une station est presque toujours un indice de grande 
humidité atmosphérique pendant la période de végétation. 

En Amérique, nous rencontrons la première Orchidée épiphyte 
de la zone tempéré boréale: l’Epidendrum conopseum, dans la 
Floride et dans la Caroline du Sud. Elle y croît par 32° lat. N., 
près des rivages de la mer, sur les branches de chênes toujours 
verts ou de Magnolia grandiflora. En Asie, le joli Dendrobium 
moniliforme Sw. nous montre, au Japon, l’épiphytisme des 
Orchidées. 

Dans l’hémisphère austral, la limite des Orchidées épiphytes 
américaines ne dépasse pas le 35° de latitude Sud. Les der- 
nières Orchidées épiphytes que nous rencontrions au Sud 
sont le Sigmatostalix brachycion (24° lat. S.), un Epidendrum, 
l'Zsochilus linearis, l'Aeranthus filiformis (23° lat. S.), les Onci- 
dium Batemannianum (26°), bifolium et viperinum (30 à 35° 
lat. S.). Dans la partie orientale de cet hémisphère, les der- 
nières Orchidées épiphytes se trouvent en Nouvelle-Zélande et 
en Tasmanie : Eayrina mucronata et autumnalis, Dendrobium 
Cunninghami, Bulbophyllum pygmaeum et Sarcochilus adversus 
(42° lat. S.). 

Entre ces deux limites, 32° lat. N. et 35° lat. S., l'Asie et 
surtout l'Amérique nous offrent le plus grand nombre d’Orchi- 
dées épiphytes. Dans le premier de ces continents, nous les 
trouvons surtout dans la région himalayenne entre 2000 et 
5000 pieds d’altitude (D' Brandis). En Amérique, l'isthme de 
Panama, les Guyanes, les Républiques Sud-Américaines et le 
Brésil, renferment la presque totalité des cent dix-huit genres 
d'Orchidées épiphytes relevés par Schimper, soit plus des deux 
tiers des genres américains. 


Les Orchidées terrestres sont par excellence les Orchidées des 
zones froides et tempérées. Elles occupent surtout les régions 
boisées et montagneuses des deux hémisphères, Elles constituent 
seules la flore orchidéenne de l’Europe, de l’Asie et de l’ Amérique 
septentrionale, et presque exclusivement celle du Japon, de la 
Chine et de l'Amérique centrale septentrio- 
nale. Les coteaux et les marais de l'Australie 
et de l’Amérique tropicale en renferment un 
grand nombre. L'Afrique méridionale, et 
plus particulièrement le Cap, où les Mono- 
cotylédones dominent, nous offrent plus de 
deux cents espèces d'Orchidées terrestres. 
Ce chiffre n’est égalé, et dépassé peut être 
que par celui de la Flore australienne, la 
plus riche du globe à ce point de vue. 


L'écart des températures extrêmes exerce sur 


Fig. 212.— Anœæctochilus 


la répartition des plantes une influence aussi TE. 


forte que l'élévation de la température 

moyenne. La plante doit-elle être soumise à des écarts considé- 
rables de température, les racines et les pseudo-bulbes même 
seront souterrains : Disa, Obhrys. La température est-elle pres- 
que uniforme, les réserves de la plante n’ont pas besoin de la 
protection du sol, les pseudo-bulbes seront aériens : Cattleya, 
Odontoglossum. De 1à cette conséquence : les genres à végé- 
tation souterraine auront seuls une aire de végétation étendue; 
leurs racines, leurs réserves alimentaires enfouies dans le sol, 
peuvent plus aisément résister aux variations atmosphériques. 
Les Calanthe, les Liparis, les Epipactis, le Corallorrhiza, les 
Eulophia, les Physurus, les Orchis, toutes Orchidées terricoles, 
occupent de vastes territoires s'étendant dans plusieurs conti- 
nents. Les Orchidées épiphytes ont fatalement un domaine 
peu étendu. Nous ne connaissons que trois genres épiphytes, 
Bulbophyllum, Polystachya et Cymbidium, dont l'aire de dispersion 
s’étende sur plus d’un continent. 


IV. ÉTENDUE DE L'AIRE DE DISPERSION DES DIVERS TYPES. — 
L’étendue de l’aire de dispersion des genres orchidéens est essen- 
tiellement variable. Certains types se rencontrent toutefois sur 


de vastes espaces : deux d’entre eux, les Habenaria et les Liparis 
ayant des représentants en Europe, en Asie, en Afrique, en Océanie 
et dans les deux Amérique pourraient être considérés comme 
cosmopolites. Les Orchis, les Cephalanthera, les Spiranthes et 
les Goodyera vivent en Europe, en Asie, en Afrique et en 
Amérique; les Cypripedium, les Cœloglossum, les Epipactis, 
les Listera, les Malaxis, les Microstylis, le Calypso borealis et le 
Corallorrhiza croissent en Europe, en Asie et en Amérique. 
Tous sont terricoles : seules, de pareilles Orchidées ont le 
moyen de résister aux froids hibernaux. 

Plus de la moitié des genres décrits sont propres à une seule 
partie du globe. En Amérique, nous trouvons 191 genres endémi- 
ques; dans le domaine asiatique, y compris l’Archipel Malais, 72; 
en Afrique 23; en Australie, 7 sur 29 genres ; à Madagascar 3; en 
Europe, en rattachant les îles Açores au domaine méditer- 
ranéen, 2; en tout, 298 genres dont les représentants ne se 
rencontrent que dans une seule région. 


V. AFFINITÉS DES FLORES ORCHIDÉENNES. — Les Flores 
orchidéennes de l’Asie et de l'Afrique d’une part, celles de 
l'Asie et de l'Australie d’autre part, présentent le plus d’aff- 
nités. L'Amérique du Nord, l’Asie et l’Europe ne possèdent 
en commun que huit genres; les rapports de l’Amérique avec 
l'Afrique se bornent à 3 genres et avec l’Asie à 2 genres. Trois 
genres ont des représentants en Amérique, en Europe, en Asie 
et en Australie. 

Des rapports relativement nombreux existent entre l’Asie et 
l’Australie. La flore de Madagascar se rattache d’une part à celle 
de l’Afrique, et d’autre part à celle de l’Asie. 


VI. RÉPARTITION DES ESPÈCES DANS LES DIVERSES PARTIES DU 
MONDE. — La flore américaine est la plus riche : elle comprend 
4130 espèces, soit plus de la moitié des 8000 espèces actuellement 
décrites. Après elle, vient la flore indo-malaise, qui en comprend 
2,075(1,250 dans les Indes anglaises, 825 dansl'’Archipel malais); 
l'Afrique présente aujourd’hui un peu plus de mille espèces, 
l'Australie près de trois cents; l’Europe vient naturellement en 
dernier lieu, avec 170 espèces. | | 


— 30 — 

Plus que tout autre végétal, l’Orchidée a besoin de la réunion 
de conditions infinies pour pouvoir se développer, croître et 
se multiplier. Ces conditions multiples ne se rencontrent que 
dans des localités privilégiées. Quand l’Orchidée s’installe dans 
une de celles-ci, sur la terre ou sur une branche, elle germe, 
grandit et fleurit. Y formera-t-elle souche? Cela dépendra sur- 
tout des insectes qui, butinant ses fleurs, lui apporteront le 
pollen fécondant; ces insectes doivent être de taille, de 
mœurs, d’instinct, de nature semblables à ceux de la patrie 
primitive : car la fécondation croisée est la règle. Aussi les 
rares Orchidées à fécondation directe, telles que Spathoglottis 
plicata, Spiranthes ausiralis, Eulophidium maculatum, etc., Orchi- 
dées terricoles à fleurs insignifiantes, auront l'aire de disper- 
sion la plus étendue. En règle générale, l’étendue du domaine 
d’une espèce est en raison inverse de la beauté de ses fleurs 
et de la complication des procédés destinés à y assurer la fécon- 
dation croisée. - 

Avant de terminer ce rapide résumé, nous devons signaler une 
énigme dont la solution n’est pas encore trouvée : le genre Tipu- 
laria Nutt., comprend deux espèces habitant l’une le Nord de 
l'Amérique, l’autre les hauts plateaux de l'Himalaya! 

Il est bien difficile dans l'état actuel de nos connaissances, de 
dégager une loi régissant la distribution des genres. Une telle 
loi existe-t-elle? C'est extrêmement douteux. Nous ne savons 
rien encore sur l’apparition des formes génériques dans le temps 
et notre ignorance est tout aussi complète sur la marche de la 
dispersion des genres à travers les terres émergées. 


VII. CANTONNEMENT DES ORCHIDÉES. — Douée d’une extrême 
sensibilité, impressionnable au plus haut degré aux agents 
physiques, l’Orchidée se trouve naturellement cantonnée dans 
des habitats limités. Aucune autre famille ne nous présente 
à la fois un pareil nombre d’espèces (plus de 8000!) et un 
groupement aussi localisé. Quelques genres ont plus de cent 
espèces : Masdevallia, Bulbophyllum, Maxillaria, Odontoglossum, 
Eria Liparis, Stelis. Les Dendrobium, les Epidendrum, les Onci- 
dium les Pleurothallis et les Habenaria comptent seuls plus de 
300 espèces. 


0 — 

Les deux tiers de ces genres à espèces nombreuses sont amé- 
ricains. Si on ne tient pas compte des genres créés par Barbosa 
Rodrigues, il y a cinquante-six genres américains monotypes. 
Ces genres monotypes ne sont pas nécessairement endémiques. 
Ainsi on rencontre le Malaxis paludosa (fig. 221) et le Calypso 
borealis (fig. 209) en Europe, en Asie et dans l'Amérique boréale; 
l'Eulophidium maculatum au Brésil et, dit-on, dans l’Afrique 
tropicale; le Liparis Læselir (fig. 222) en Europe et dans l’Amé- 
rique boréale; le Perularia fuscescens en Amérique et dans l’Asie 
boréale. On ne les rencontre jamais que dans des stations limitées 
et très spéciales. Ce sont là des faits inexpliqués jusqu'au- 
jourd'hui. 

Les deux Orchidées épiphytes qui ont l'aire de dispersion 
la plus étendue sont le Cattleya labiata (fig. 247) et le Rynchosty- 
lis retusa : le Catileya labiata et ses innombrables variétés occupent 
un vaste territoire Sud-Américain s’étendant de Rio de Janeiro 
au sud du Mexique, mais d'une façon discontinue. Le Rhynchostylis 
retusa habite l’Asie. On le rencontre dans presque toutes les 
parties de l'Inde, de Ceylan, de la Birmanie et de Java, mais, 
à la différence des Cattleya aux coloris si variables, la fleur du 
Rhynchostylis retusa reste identique au type dans les conditions 
les plus diverses. 

Le nombre des espèces endémiques est surtout remarquable 
en Australie : sur 270 espèces australiennes, quatorze seulement 
ont des représentants en dehors de ce continent. Dans l’Archipel 
malais, si on néglige les îles Philippines avec leurs 487 espèces 
dont 124 endémiques, nous trouvons indiquées 825 espèces dont 
plus de 600 sont endémiques ! 

Par suite de la fécondation croisée, les espèces paraissent peu 
stables: à peine fixées, elles varient à l'infini, et il est très 
rare de rencontrer identiquement la même Orchidée dans deux 
stations distinctes. De là vient ce nombre considérable, éton- 
nant, déconcertant de formes élevées au rang de variétés, voire 
même d'espèces, par des voyageurs enthousiastes, des botanistes 
naïfs ou d’habiles commerçants. Le Cattleya labiata, l’admirable 
épiphyte américaine (fig. 247) qui a une aire de dispersion rela- 
tivement très étendue nous en fournirait une preuve décisive : 
il suffirait de rappeler la polémique qui suivit la réintro- 


Es 


DENDROBIUM DENSIFLORUM VAR. ALBO-LUTEUM CHOOK) 
DENDROBIUM THYRSIFLORUM CHORT ) 


— 305-— 
duction du Cattleya labiata Ldi. sous le nom de C. Warocqueana. 
De là provient une des grandes difficultés de la classification 
des Orchidées, bien des formes devant, après examen attentif, 
être ramenées à des types précédemment décrits et ne plus être 
considérées même comme des espèces distinctes. 


VIII. GENRES A AIRE DISJOINTE. — Dans les genres nom- 
breux, il n’est pas rare de voir une espèce établie loin du centre 
de végétation du genre. On dirait une sentinelle perdue dont la 
présence est souvent inexplicable. Un des exemples les plus 
intéressants nous est fourni par les Cypripédinées. Les Paphio- 
pedium indiens ont 
une zone parfaitement 
circonscrite et bien 
délimitée. Tous sont 
compris dans cette 
partie des Indes et de 
l’Archipel malais qui 
s’étend entre les méri- 
diens 93 et135. Toute- 
fois le colonel Drury 
a découvert une char- 
mante espèce, le P. 
Druryi, à plus de cent 
lieues à l’ouest de la Fig. 213. — Fleur du Cœlogyne ocellata Lou. 
tation la plus proche var. #axima RcH8. f. (grandeur naturelle). 
de cette zone, au méridien 84, à la pointe méridionale de l'Inde 
anglaise dans les monts Travancore! 

Un autre cas bien connu est celui du Lycaste tetragona qui 
croît au Brésil à plus de deux cents lieues de ses plus proches 
parents, les Lycaste plana et linguella, des Andes de Bolivie et 
du Pérou méridional. Les Angraecum ont pour centre de végé- 
tation Madagascar, les îles Comores et les Mascareignes; une 
espèce, l'Angraecum falcatum, s'est établie au loin, séparée des 
autres par plus du quart de la circonférence du globe terrestre : 
elle croît sur les collines de Nagasaki, au Japon! 

Dès qu’une espèce s'éloigne du centre de végétation du genre, 
elle tend au nanisme : les Aérides sont presque toutes d’origine 


20 


malaise. Dans les îles de l’Archipel indien, elles émettent de 
longues tiges mi-sarmenteuses, garnies de feuilles épaisses, 
élégamment recourbées en arc: Aerides multiflorum (fig. 210), 
A. odovatum (fig. 110). Une seule espèce s’est fixée au Japon, 
l’Aerides japonicum Rchb. f. : sa tige est minuscule, ses feuilles 
sont petites, linéaires ; les racèmes émettent moins de fleurs et 
celles-ci sont peu importantes : c’est le nain de la famille. 


IX. ESPÈCES A AIRE DISJOINTE. — Quelquefois, une espèce 
dont les graines légères ont été emportées par le vent, au loin, 
très loin parfois de son centre de végétation, trouve dans l’en- 
droit où le hasard l'a fait tomber, des conditions appropriées à sa 
végétation. Elle s'y installe, s’y établit, grandit, fructifie et à 
son tour devient un centre de végétation. C’est de la sorte que 
les espèces vigoureuses étendent leur aire de dispersion en 
fondant au loin de nouvelles colonies. L’espèce peut avoir ainsi 
autour de son gisement principal des centres secondaires dont 
la liaison avec le premier reste évidente ou facile. Mais quand la 
distance grandit, quand de vastes surfaces d’eau salée séparant 
les localités où vit l’espèce, rendent impossible l’hypothèse du 
transport des graines, l'espèce nous apparaît comme ayant des 
centres de végétation indépendants; elle est disjointe. 

Certains exemples sont classiques. L’Epidendrum Randit aux 
multiples racèmes couverts de nombreuses fleurs parfumées, 
se rencontre dans deux stations fort éloignées sur la rivière 
Tapagos et vers le haut Amazone (Teffe); l’Eulophilium macula- 
tum croît au Brésil, au Congo et dans l’île Maurice; l’Orchis 
globosa L. se retrouve dans les Pyrénées, au Caucase, dans les 
plaines froides de la Volhynie et de la Podolie; l’Angraecum 
bilobum n'a été observé que sur les deux côtes opposées de 
l'Afrique : Guinée et Sierra Leone d’un côté, Zanzibar de l’autre. 

En terminant, devons-nous rappeler que le Cypripedium arieti- 
num (fig. 13,A) croît dans l'Amérique boréale, en Chine et au Thibet, 
et que le Cypripedium spectabile (fig. 225), l'espèce américaine dont 
nous avons déjà cité le nom, se retrouve également au Thibet ? 


X. LIMITES ALTITUDINALES DU DOMAINE ORCHIDÉEN. — Sous 
les tropiques nous rencontrons les Orchidées à des altitudes 
fort élevées. En Asie, le Cælogyne Wallichit atteint 3,130 mètres. 


=  — 
En Amérique, l’Orchidée s'élève plus haut encore. Linden 
découvrit l’Epidendrum frigidum à 4,300 mètres et le docteur 
Jameson, l'Oncidium nubigenum Ldl. dans les Andes de Quito, 
à 4,700 mètres(1), un peu au-dessous des neiges éternelles. 

Les Orchidées épiphytes vivent à cette altitude dans une tem- 
pérature beaucoup plus basse que la température moyenne des 
zones où nous les rencontrons généralement. La cause est iden- 
tique à celle qui fait apparaître si exceptionnellement l'Orchidée 
épiphyte dans la Nouvelle Zélande. Dans ces stations élevées, 
comme dans les îles 
Néo -Zélandaises, 
l’air est surchargé 
d'humidité, condi- 
tion nécessaire à la 
croissance des épi- 
phytes durant leur 
période végétative. 
Quant au froid, les 
Orchidées monta- 
gnardes ne le re- 
doutent guère,grâce 
à la merveilleuse 
adaptation de leur 
appareil végétatif. 
Elles montrent dans 
leur facies des indi- 


ces très remarqua- 
bles de leur endu- Fig. 214. — Esmeralda Sanderiana Rous,. f. 


rance au froid. Comparez l’Epidendrum frigidum à tout autre 
Épidendre. Où trouver pareille grosseur du sympode, pareil 
aspect vernissé des feuilles ? Ces enveloppes protectrices, ces 
réserves abondantes s'expliquent quand on se rappelle l'habitat 
de cette Orchidée : les hauts sommets de la Sierra Nevada de 
Merida au Vénézuéla et le volcan de Pasto au Pérou. En ces 
points, la température moyenne n’est que de + 4° C. et la neige 
recouvre souvent et la terre et la plante. 


(1) À Anseray, un des points culminants des Andes péruviennes. 


— 308 — 


XI. INFLUENCE DE L'ALTITUDE. — Dans tous les pays, mais 
surtout sous les Tropiques, le climat subit des variations 
considérables en raison de l'altitude à laquelle se trouve la 
localité. Le touriste le plus ignorant des lois de la géographie 
botanique, faisant une ascension dans les Alpes, est surpris de 
rencontrer, en une seule journée de marche, des plantes appar- 
tenant à la Flore méditerranéenne (Cactus, Grenadier, Amandier), 
à celle de l’Europe tempérée et à celle de la flore arctique. 
Le voyageur qui gravit les pentes un peu plus difficiles et moins 
hospitalières des Cordillères ou de l'Himalaya, passe successive- 
ment par tous les enchantements de la flore tropicale, subtro- 
picale, tempérée et alpestre. Il traverse les terres chaudes, celles 
qui s'étendent depuis le niveau de la mer jusqu’à 700 mètres 
d'altitude, les terres tempérées de 700 à 2,000 mètres et les terres 
froides au-dessus de cette limite. Si nous nous en rapportons 
aux moyennes de température des diverses altitudes, nous trou- 
verons assez approximativement la température moyenne de 
l'habitat d'une plante en diminuant de 1° C. par 180 mètres 
d'altitude la température moyenne normale de la zone. 

Toutefois, par suite de circonstances spéciales, certaines 
contrées jouissent d’un climat exceptionnel, étant donnée leur 
altitude. Il en est ainsi de la vallée de Sikkim dans les Indes. 
Cette vallée est située à 2,100 mètres, c’est-à-dire bien au 
dessus de la limite habituelle des plantes tropicales. Entourée 
de toutes parts de hautes montagnes, elle forme comme une 
serre humide et chaude, dont l’admirable végétation émerveille 
le botaniste et le voyageur. Les pluies abondantes, une tempé- 
rature toujours chaude empêchent la pomme d’y murir, la pêche 
et la poire de s’y former; mais que de merveilles rassemblées 
dans cette luxuriante végétation! Dans cette humide région, 
pendant la saison pluvieuse, une lueur pâle due à la phospho- 
rescence des végétaux rayonne des forêts. Les plantes de la 
zone torride s’entremêlent dans les forêts du Dardjeeling à celles 
de la zone tempérée; les Orchidées épiphytes s’attachent aux 
cîmes des Chênes verts et nous y rencontrons, à côté de Noyers 
et de Palmiers, des Orchidées dont les espèces cogénériques 
habitent l’Archipel malais, Chrysoglossum, p. ex.; les Pleione 
couvrent de leurs tubercules bizarres les troncs d'arbres au point 


qu’à l’époque de la floraison, ceux-ci semblent couverts de neige. 
A Bornéo, à Ceylan, à Java, la flore varie de cent en cent 
mètres, tandis qu’en Europe de trois à six cents mètres d'altitude 


Fig. 213. — Extrémité du racème de l'Oncidium varicosum LDL. var. Rogersi. 
Fleurs de grandeur naturelle. 


la flore diffère peu de celle de la plaine. Dans les régions chaudes 
du globe, à deux cents mètres d'altitude, vivent des végétaux qu'on 


io 


ne rencontre plus à une altitude plus élevée. Les Anœctochilus 
(fig. 212) ne croissent que sur les hauteurs, mêlés aux Fougères, 
aux Selaginella, aux Pellionia, à deux ou trois cents mètres d’alti- 
tude, en général au pied des roches de grès, où pendant la saison 
des pluies l’eau suinte constamment. 

De même que certains genres ont une aire de dispersion très 
étendue en latitude, d’autres genres voient leurs espèces s’étager 
le long des pentes et sur les versants des montagnes. Ne tenant 
compte que des Orchidées himalayennes, les Pleione, les « Crocus 
de l’Inde », nous offriront un exemple frappant de cette répar- 
tition : le Pleione maculata fleurit à 800 mètres tandis que le 
Pleione Hookeriana vit à 3,000 mètres. Le Vanda cristata Lidl. 
produit une forme spéciale, le Vanda alpina Greff. qui croît dans 
les monts Khasia à une altitude de 1,200 à 1,700 mètres. Mais 
ici, comme pour l'Aerides japonicum, nous constatons la même 
décroissance de la taille, le même nanisme de la plante à mesure 
que son habitat est plus élevé. 

En Amérique, les Odontoglossum nous montrent des faits 
analogues. Ils sont établis dans la région tropicale sur une 
zone s'étendant en hauteur de 1,700 à 4,000 mètres. L’Odonto- 
glossum grande, ce hôte des ravins obscurs du Guatémala, nous 
présente de grandes fleurs, un appareil végétatif puissant tandis 
que les Od. densiflorum, Od. compactum, etc., croissant sur les 
rochers, au dessus de la limite des arbres, à 4,000 mètres d’alti- 
tude, ne nous offrent que de petites fleurs et une tige rabougrie. 

L'altitude d'une station exerce une influence directe sur les 
habitudes de la plante, et son mode de végétation s’en ressent 
immédiatement. Ainsi, le Dendrobium nobile croît au Sikkim de 
300 à 1,800 mètres. Mais tandis que dans les terres chaudes, il 
s’établit sur les branches les plus élevées des arbres, bercé et 
rafraîchi par les moindres brises, au-dessus de 1,300 mètres nous 
le rencontrons seulement sur des rochers chauffés pendant le 
jour par ce soleil qui brille toujours, même en hiver, et résistant 
aux refroidissements nocturnes grâce à la chaleur accumulée 
dans la pierre des rochers. 


XII. DES CAUSES QUI INFLUENT SUR LE DÉVELOPPEMENT DE 
L'ORCHIDÉE. — Nous venons de signaler les deux causes, lati- 


tude et altitude, qui influent sur la chaleur de la station végétale. 
A ces causes, quand on étudie les différents habitats de l’Orchi- 
dée, il faut joindre d’autres éléments météorologiques impor- 


tants : la température de l'habitat, l'intensité de la lumière, la 


EX, 


\\ x “a 
\ PE ——— 


à ANA 


Fig. 216. — Spathoglottis aurea Loz. 
transparence de l’air, son état hygrométrique, ainsi que la quotité 


et la répartition des pluies. 


A) Constance de la température. — L'Orchidée terricole, avons- 
nous dit, peut résister aux écarts étendus de température : 


signalons en Europe, les Orchis, en Afrique, les Disa. Les pre- 
miers résistent au froid de nos hivers et aux chaleurs de nos étés. 
Les Disa et notamment la plus belle espèce, le Disa grandiflora, 
l’orgueil de la Montagne de la Table, sa patrie, supportent 
d’énormes variations : la température s’élevant sur cette mon- 
tagne du Cap de Bonne Espérance de + 1° C. à + 36° C. 
L’'Orchidée épiphyte ne supporte pas de pareils écarts de tem- 
pérature: le sol ne la protège pas. Pour chacune d’elles, il 
convient donc d'étudier avec la plus grande attention, la chaleur 
de son Paradis, comme disait si bien, l’illustre palmographe 
Martius. Certaines îles, certaines parties des continents, étroites 
ou profondément déchiquetées, érodées par la mer ou traver- 
sées par des fleuves immenses, jouissent d’un climat à moyenne 
constante, n’offrant pas de brusques écarts de chaleur et de 
froid : telles sont ces îles de l’Insulinde (1), Bornéo, Java; tels 
sont encore, l’isthme de Panama(2), le Brésil, etc. À mesure 
qu'on s'éloigne des côtes, l'inégalité des températures devient 
plus considérable. Dans les Indes Orientales, tandis qu'à 
Colombo (Ile de Ceylan) la température moyenne reste inva- 
riable de 260 à 280 C., telle localité du Pundjab (Dera-Ismael- 
Khan), se trouvant dans l’intérieur des terres, subit des 
variations de 26° C.(3). En Afrique, dans le pays de Gaza, situé 
cependant dans le voisinage de l’Équateur, il n’est pas rare de 
constater sur les hauteurs, quand soufflent les vents du Sud, de 
brusques écarts de 30° et 35° dans l’espace de quelques heures; 
aucune Orchidée n’est signalée dans ce pays. Si on en découvre 
quelque jour, ce seront des Orchidées terricoles insignifiantes. 


B) Intensité de la lumière. — La lumière est, on le sait, l'un des 
facteurs principaux de la vie végétale. Plus on avance vers 


(1) A Palembang (2'50° lat.S.) la température moyenne varie à peine de 2704 
en mai à 2606 en janvier. 

(2) La température de l'Amérique centrale est surtout caractérisée par son 
uniformité, notamment pour les minima survenant vers les dernières heures de 
la nuit. La température à Costa Rica par exemple, est loin de s’élever comme 
sur le continent européen, où le thermomètre marque parfois 370 7/9 C. Le 
maximum n’y a pas dépassé 2601/9 C. La température des nuits est extrème- 
ment douce et agréable: elle ne descend guère au dessous de1595/9 C.(R. Pfau). 

(3) Janvier + 9° C., juillet + 35°. 


Nr — 
l'Équateur, plus son rôle est actif, prépondérant. Dans la forêt 
tropicale, partout où pénètre un rayon de lumière, naît et gran- 
dit une plante. Certaines Orchidées tropicales ne peuvent, faute 
de lumière suffisante, être cultivées dans nos serres les plus 
chaudes. 

Toutes les Orchidées n’ont pas besoin de cette extrême abon- 
dance de lumière. Le groupe américain des Orchidées sans 
pseudo-bulbes — Pescatorea, Warscewiczella, Bollea, etc. — 
croît sur les rochers, les troncs et les branches d’arbres, dans 
les clairières très ombragées : trop de lumière les tuerait. Il en 
est de même des Chysis, de nombreux Cypripedium, du plus grand 
nombre de Masde- 
vallia, qui croissent 
spontanément dans 
des stations où la 
condensation de l’eau 
forme des nuées con- 
stantes servant d’é- 
cran aux ardeurs du 
soleil. Un grand nom- 
bre d’Orchidées épi- 
phytes croissant aux 
bifurcations des bran- 
ches, reçoivent une 


lumière tamisée par 


les feuilles des ar- Fig. 217. — Grammatophyllum Fen:lianum Var. 
bres. La plupart des Measuresianum. 
Odontoglossum (O. cariniferum, Schlieperianum, Œrstedii, etc.), 
quelques Oncidium(O.cheirophorum, etc.), des Epidendrum(£E. pris- 
matocarpum et les espèces voisines), les Paphiopedium du groupe 
du P. caudatum (1) (fig. 218), redoutent autant la lumière directe 
qu’une ombre épaisse. 

Un très grand nombre de nos plus belles Orchidées : les 
Cattleya (fig. 274), les Laelia (fig. 276), la plupart des Onct- 
dium (fig. 268), les Grammatophyllum (fig. 217), les Trichopilia 


(1) Ces Orchidées sont les Selenspedium des horticulteurs, qu'il ne faut pas 
confondre avec les Selenipedilum de Pfitzer. 


=. — 
(fig. 56 et 158), les Sobralia (fig. 157 et 264), les Epidendrum 
atropurpureum et E. Stamfordianum (fig. 224), ont besoin d’une 
lumière abondante pendant une partie de l’année. Dans leur 
patrie, ces Orchidées sont exposées aux rayons directs du soleil 
pendant la saison sèche; mais pendant la saison humide, qui 
est celle de leur développement, elles sont abritées par le 
feuillage des arbres; protégées le jour contre les ardeurs du 
soleil par d'épais nuages, elles sont enveloppées le soir d’un 
brouillard opaque qui couvre toute la végétation. 


c) État hygrométrique de l'air. — Il importe, surtout dans les 
zones chaudes, de tenir compte de l’état hygrométrique de l'air. 
Cette cause modifie profondément l'influence de l’éclairement. 
Si les plus admirables Phalaenopsis naissent, vivent et fleu- 
rissent sous les ardeurs dévorantes du soleil équatorial, c’est 
que leurs racines, leurs feuilles et leurs racèmes sont baignés 
par les embruns de la mer, se brisant au pied des rochers 
ou des arbres qui leur servent de supports. En Australie, de 
nombreuses Orchidées croissent sur la côte est où elles 
reçoivent par an plus de 2",54 d’eau, tandis qu’on ne rencontre 
aucun représentant de cette famille dans les parties du territoire 
australien éloignées de la mer et ne recevant guère plus de 
0,30 d'eau annuellement. 

Pluies. — Dans les îles de l’Océan Pacifique, comme dans 
l'isthme de Panama et les nombreuses chaînes de montagne 
brésiliennes qui viennent s’y greffer, les pluies varient du simple 
au décuple, suivant l’exposition des versants tournés dans la direc- 
tion des vents de mer ou du côté opposé. Dans certaines vallées, 
s’amassent sans cesse des nuages, et la quantité d’eau que ceux-ci 
déversent est énorme; dans certaines îles plates, au contraire, 
situées dans le voisinage de l’Équateur, les averses se font rares; 
la moyenne des eaux pluviales est fort réduite; les Orchidées y 
sont rares, tandis qu'elles abondent sous les Tropiques, partout 
où les pluies et les brouillards leur apportent l'humidité indis- 
pensable. Ceylan nous offre à cet égard une preuve concluante : 
située dans la zone équatoriale, cette contrée est séparée en deux 
parties par un système de hautes montagnes. Dans la partie du 
nord-est, la plus grande, les sécheresses sont longues et la 


si 


moyenne annuelle des pluies est très réduite : les Orchidées sont 


Fig. 218. — Paphiopedium X grande Reus. f. 


— 316 — 


peu nombreuses. Dans la partie sud-ouest, les pluies sont plus 
abondantes, des brouillards épais saturent l’atmosphère : la flore 
orchidéenne y rappelle presque par son éclat et son intensité 
celle des îles de la Malaisie. 


D) Répartition de l'humidité. — Il ne suffit pas de se rendre 
compte de la quantité des précipitations atmosphériques qui 
tombent sur une contrée pour apprécier la flore orchidéenne. Il 
faut encore connaître de quelle manière celles-ci se répartissent. 
Une excessive humidité succède-t-elle brusquement à une séche- 
resse persistante et absolue, comme en tant de pays tropicaux, 
nous nous trouvons en présence d’une saison sèche et d’une 
saison humide plus ou moins longue, plus ou moins régulière. 
A côté de ces précipitations aqueuses, il ne faut pas oublier un 
autre facteur climatérique très important, la rosée : elle est plus 
abondante sous les tropiques que dans n’importe quelle contrée 
d'Europe, et elle supplée en partie au manque de pluie pendant 
la saison sèche. 

Au Moulmein et dans l’Arracan, la saison sèche commence en 
décembre et finit à la mi-mars. C’est la période de repos; les 
Orchidées s’engourdissent dès que la sécheresse arrive. Pendant 
cette saison, les arbres perdent leurs feuilles; les herbes de la 
brousse roussissent et se dessèchent. Jusqu'à une altitude de 
300 mètres, toute la contrée présente l’aspect désolé d’un terri- 
toire ravagé par le feu(1), La température y atteint 49° C. 


XIII. SOcIABILITÉ DES ORCHIDÉES. — A la différence d’autres 
plantes, comme l’Alfa et le Chamaerops, l’Orchidée n’est point 
une plante sociale, envahissante, c’est-à-dire ne tolérant guère 
d'autres plantes autour d’elle. Bien au contraire, les Orchidées 
vivent plutôt isolées, et se cachent à l’abri d’autres plantes. 
Il suffit de rappeler nos Orchidées terricoles européennes qui 
abritent leurs pseudo-bulbes sous les tiges des graminées 
voisines. On trouve un pied d’Orchis ici, un autre un peu plus 
loin, plus loin encore un troisième; mais, presque jamais nous 


(1) Gardener's Chronicle, 1870, p. 796. 


PL. XXI. 


LAELIA PORPHYRITÉS REICH FIL 


ne voyons les Or- 
chis croître sponta- 
nément en touffes 
tant soit peu éten- 
dues. 

Un certain nom- 
bre d’Orchidées 
sont cependant 
sociales : tel est 
le cas du merveil- 
leux Vanda Hooke- 
riana, qui, à Perak, 
croît en si grand 
nombre dans la 
brousse qu’on lui 
a donné le nom 
d'Herbe de Kinta. 
D'autres espèces 
semblent se re- 
chercher : l’Esme- 
ralda Sanderiana 
(fig. 214) et l’Aeri- 
des Lawrenciana 
croissent toujours 
côte à côte à Min- 
danao ; le Vanda la- 
mellata et l’Aerides 
quinquevulnera à 
Manille, le Vanda 
cæœrulea et l’Aerides 
Fieldingii dans les 
Monts Khasya, le 
Vanda tricolor et 
l’Aerides virens à 
Java, le Sarcochilus 
Fitzgeraldii, le 
Dendrobium  Kin- 


gianumet le Libaris 


Fig. 219. — Puphiobedium Elliottianum Pri1rz. 


— 318 — 


reflexa, en Australie; plusieurs Odontoglossum (O. crispum, 
O. Pescatoret, O. triumphans) croissent ainsi dans les mêmes sta- 
tions des Cordillères (3,300 mètres d'altitude); ce voisinage 
contribue dans une proportion considérable aux hybridations de 
ce genre, véritable Protée botanique. Un grand nombre d'Odon- 
toglossum aujourd’hui admis comme espèces ne sont probable- 
ment que des variétés : leur multiplicité même dans des habitats 
peu éloignés les uns des autres, semble confirmer cette manière 
de voir. 


XIV. VARIABILITÉ. — Quelles que soient leurs stations — 
rapprochées ou distantes — les Orchidées sont soumises aux 
deux lois opposées qui régissent le monde : l’hérédité et la varia- 
bilité. Cette dernière l'emporte souvent. Tout orchidophile a 
désespéré, au moins une fois dans sa vie, de se retrouver au 
milieu du chaos des genres, des espèces et surtout des variétés 
de certains groupes. 

L'Orchidée a un organisme d’une délicatesse extrême; elle 
subit donc d’une manière étonnante l'influence du milieu. Une 
des plus jolies Orchidées alpines de la Nouvelle-Grenade, le 
Masdevallia ignea, nous en fournit une preuve intéressante. On le 
rencontre de 2,800 à 3,700 mètres. Les premières plantes vivent 
dans un sol profond, dans des stations plus ou moins ombrées : 
leurs feuilles sont plus grandes, moins raides; leurs fleurs 
incarnat sont brillantes, uniformes, métalliques. Les plantes des 
stations supérieures diminuent en taille et en éclat; les dernières 
n’ont même plus le flamboyant reflet métallique des premières. 


XV. ACCLIMATATION. — L’extrême sensibilité des Orchidées 
d’une part, le peu d'utilité de leurs pseudo-bulbes, de leurs 
feuilles, de leurs fleurs et de leurs fruits d’autre part, telles sont 
les causes de l’extrême rareté des espèces naturalisées en dehors 
de leur habitat. Seule, la Vanille a vu son domaine s’accroître 
par les efforts de l’homme, au point de rendre aujourd'hui fort 
incertaine sa patrie primitive. Si elle est américaine, comme 
beaucoup le croient, elle présente aux yeux du botaniste, cette 
étrange particularité d’être la seule Orchidée caulescente améri- 
caine, tandis qu’en Asie les Orchidées caulescentes ne sont pas 
rares. 


— 419 

A côté de la Vanille, nous devons encore citer le Phajus 
Tankerville:i (fig. 27), Orchidée asiatique, introduite par le caprice 
d'un amateur et devenue subspontanée à la Jamaïque. 

Délicate entre toutes les plantes, l’Orchidée ne peut changer 
de patrie qu’en gardant sa première manière de vivre : il faut 
absolument qu’elle trouve dans le nouveau milieu où sa graine 
est jetée par le hasard des vents ou le caprice du semeur, toutes 
les conditions habituelles de son habitat primitif. Après de 
longues années d'introduction et de culture dans nos serres, 
les Orchidées ne pourraient-elles point modifier leur consti- 
tution au point de vue de la quantité de chaleur ou d'humi- 
dité qu'elles réclament? La réponse est évidemment négative. 
Quelque lointaine que soit la date de l’introduction d’une plante, 
la quantité de chaleur et d'humidité dont elle a besoin ne se 
réduit, ni ne s’accroît. C’est là une règle générale que connais- 
sent les cultivateurs même les plus étrangers aux choses horti- 
coles. Le feuillage de la pomme de terre, celui du haricot ne 
résistent pas plus à une gelée légère aujourd’hui qu’à l’époque 
où ces plantes furent introduites dans nos cultures. 


CHAPITRE ARE 


PATRIE DES ORCHIDÉES. 


I. LE GLOBE TERRESTRE ET L'ORCHIDÉE. — Les cercles 
polaires et les tropiques partagent la surface terrestre en cinq 
zones : deux zones glaciales, s'étendant chacune d’un cercle 
polaire au pôle correspondant; deux zones tempérées, l'une et 
l'autre limitées par un cercle polaire et un tropique; enfin une 
zone torride, à cheval sur l'Équateur et s'étendant d’un tropique 
à l’autre. L'inégale répartition de la chaleur et de la lumière 
solaire, la configuration tourmentée de la surface terrestre, le 
partage inégal du globe en continents et en mers, etc., ont amené 
des diversités telles dans le climat des zones qu'elles contrai- 
gnent le botaniste à réunir entre elles, à l'exemple de Humboldt, 
les localités de même température moyenne par des lignes 
isothermes. Le parallélisme des tropiques et des cercles polaires 
est dès lors rompu : il se trouve remplacé par des lignes affec- 
tant la plus capricieuse irrégularité. Ces lignes isothermes divi- 
sent le globe terrestre en sept zones de chaque côté de l’Équateur 
(fig. 220): zone torride, zone chaude, zone douce, zone tempé- 
rée, zone froide, zone très froide et zone glaciale. 

Nous n’aurons pas à nous occuper des zones glaciales dans 
le voyage que nous allons faire rapidement autour du monde à 
la recherche de la patrie des Orchidées : leurs courts étés sans 
chaleur malgré leur jour sans fin ne permettent pas à l'Orchidée 
de s’y développer. 


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— 322 — 


IT. ZONE FROIDE BORÉALE. — La plus septentrionale des 
Orchidées est le Calypso borealis (fig. 209); elle paraît dans l’hé- 
misphère boréal vers le 72° de latitude. Le Calypso borealis ne 
présente qu’une tige grêle portant une seule fleur avec labelle en 
forme de sabot. Une seule feuille franchement pétiolée se dresse 
à sa base; ses fleurs sont pourpres ou lilas; le labelle est rose 
ponctué de jaune et velouté. Il croît dans les parties septentrio- 
nales de l’Europe, de l’Asie et de l'Amérique : son domaine 
ne dépasse pas néanmoins l’extrême nord de la Laponie euro- 
péenne et l’embouchure de la Lena dans la Sibérie. A côté de 
cette Orchidée, nous rencontrons quelques Listera. Les Cypri- 
pédinées apparaissent vers le 58° lat. N.; ce sont naturellement 
des espèces à feuilles caduques. Le Cypripedium macranthum est 
celui qui a l’habitat le plus septentrional : il croît dans les bois 
de bouleau de la Sibérie asiatique. Dans cette même Sibérie, nous 
trouvons le Goodyera repens, une des rares Orchidées européo- 
américaines; l'Eprpactis palustris, hôte des marais et des lieux 
humides dans les régions montagneuses de l’Orient et de l'Europe 
septentrionale et centrale; le Cephalanthera rubra, dernier repré- 
sentant d’un des rares genres à aire très étendue; un Microstylis 
(M. monophylla), Orchidée boréale européo-américaine, et le 
Malaxis paludosa (fig. 221) cette curieuse Orchidée que Bur- 
bidge(1) regardait comme une épiphyte. Il est vrai que cet épi- 
phytisme ne se manifestait que sur le sphagnum! Ajoutons à 
cette liste des Orchidées boréales, quelques Ophrys, des Neottia, 
des Spiranthes, un Tipularia et, dans l’île de Sakhalin, l’Ephip- 
pianthus Schmidtii, qui est peut-être un Liparis. 

Les Orchidées de la zone froide boréale appartiennent donc 
à neuf ou dix genres au plus; la plupart ont des fleurs très 
petites, insignifiantes. 


III. EXTENSION DU DOMAINE DES GENRES CEPHALANTHERA ET 
SPIRANTHES. — Nous venons de signaler, dans l'hémisphère 
boréal, les premiers représentants de deux genres qui méritent 
d'être étudiés à raison de l'étendue considérable du domaine qu’ils 
occupent, les Cephalanthera et les Spiranthes. 


(1) Gardeners’ Chronicle, sér. II, t. XXI, p. 144, 


— 323 — 

Orchidées terricoles, à racines fibreuses, à feuillage caduc, 
à fleurs petites, susceptibles d’autofécondation pour le cas où 
aucun insecte ne viendrait les visiter, les Cephalanthera 
(fig. 155, A) peuvent vivre partout. Les dix espèces habitent 
l’Europe, la partie nord de l’Afrique, les régions tempérées et 
montagneuses de l'Asie, et l’Amérique boréale occidentale : 
elles croissent dans les taillis sur les coteaux boisés. 

Le genre Spiranthes (fig. 61) est de tous les genres orchi- 
déens celui dont le domaine est le plus étendu. Sauf dans l’Afrique 
tropicale et méridionale, sa présence a été signalée dans toutes les 
parties du monde. Plus remarquable par la facilité de son adap- 
tation aux divers climats que par sa beauté ou son utilité, cette 
Orchidée a des stations dans la zone froide boréale et dans la 
zone tempérée, dans les plaines aux âpres hivers du Canada et 
de la Sibérie, comme dans les montagnes 
ensoleillées de l'Amérique du Sud et des 
Indes orientales. Son domaine s'étend 
en Amérique des solitudes canadiennes 
jusqu'au Chili. On la voit en Afrique le 
long du bassin méditerranéen. Elle s'é- 
tend,à travers l’Asie et l’ Archipel malais, 
jusqu'en Australie et à la Nouvelle- 
Zélande. Aux îles Bermudes, le Spiranthes 
représente seul la famille orchidéenne. 
Une espèce surtout se distingue par la 
diversité de ses patries: le petit Spiranthes > 
aestivalis (fig. 61) dont le S. australis ARS: ; 

Re ig. 221. — Malaxis palu- 
semble n'être qu’une forme asiatique. dosa Sw. 
On le rencontre en Europe et on le suit en Asie depuis l’Afgha- 
nistan et la Chine, jusqu’en Australie et dans la Nouvelle- 
Zélande. Une espèce nord-américaine, le Spiranthes Romanzoffiana 
offrait jadis un intéressant exemple de stations disjointes, car on 
la trouvait aussi dans le Comté de Cork en Irlande; mais les 
progrès de la culture intensive l’ont, paraît-il, fait disparaitre, et 
le Shiranthes Romanzoffiana, n’est plus aujourd'hui qu’un souvenir 
dans la verte Erin. 


IV. ZONE TEMPÉRÉE BORÉALE. — Dans les régions situées 


 — 
entre les lignes isothermiques + 10° à + 15° de l'hémisphère 
septentrional, le nombre des Orchidées est beaucoup plus consi- 
dérable; les genres deviennent plus nombreux, les espèces, plus 
variées. À côté du Calypso borealis, des Cypripedium, des Spi- 
vanthes, des Cephalanthera, apparaissent des genres nouveaux. 
Au premier rang, nous devons citer les Liparis et les Orchis, 
qui ont donné leur nom à la famille entière. 

Orchidées nord-américaines. — Un petit nombre d'espèces (72), 
intéressantes surtout au point de vue botanique, habitent le nord 
des États-Unis et du Canada(r). Dix-neuf genres y sont repré- 
sentés : Microstylis (3), Liparis (2), Calypso (1), Tipularia (1), 
Aplectrum (1), Corallorhiza (5), Listera (3), Hexalectris (1), 
Spiranthes (6), Goodyera (3), Epipactis (2), Arethusa (1), 
Calopogon (1), Pogonia (5), Orchis (3), Gymnadenia (3), Peru- 
laria (1), Platanthera (21), Cypripedium (9). 

Orchidées européennes. — La flore orchidéenne de l’Europe 
comme celle de l'Amérique du Nord est essentiellement terricole. 
Un fait la domine. Vingt-huit genres d'Orchidées y ont des 
représentants; toutefois quinze d’entre eux ne sont représentés 
que par une seule espèce : Calypso, Corallorrhiza, Epipogon, 
Sturmia, Neottia, Goodyera, Anacamptis, Neotinea, Charmaeor- 
chis, Herminium, Comperia, Malaxis, Himantoglossum, Microstylis 
et Limodorum. Les Ophrys et les Orchis sont les genres euro- 
péens offrant le plus grand nombre d’espèces : 23 Ophrys, 
24 Orchis. Aux dix-sept genres que nous venons de citer, il 
convient d'ajouter : Listera, Coeloglossum, Aceras, Nigritella, 
Spiranthes, Cephalanthera, Epipactis, Gymnadenia, Cypripedium, 
Serapias, Platanthera. 

Trois genres sont endémiques : Chamaeorchis, Nigritella, 
Malaxis. Des cent vingt-deux espèces de la Flore européenne, 
quarante-huit lui appartiennent exclusivement. 

Nous devons constater la ressemblance des flores orchidéennes 
de l'Europe et de l'Asie boréale: vingt et une espèces d’Orchidées 
leur sont communes; tandis que quatre seulement sont com- 


(x) Cf. J. Macoux. Catalogue of Canadian Plants, 1888, Orch., p. 2, vol. II. 
— A. GRAY, Manual of the botany of the United Sates, 1890, Orch., p. 497. 
— CouLtTEer, Manual of the botany of Rocky mountains Orch., p. 340 (1885). 


sen 
munes à l’Europe et à l'Amérique boréale, sept vivent à la fois 
en Asie et dans l'Amérique boréale. Dix espèces sont propres 
au bassin méditerranéen. Treize ont des représentants en 
Europe et dans l'Afrique septentrionale (si on comprend les 
îles Canaries dans le domaine africain). 

Orchidées indigènes belges. — En Belgique, dans les prairies 
humides ou à l’orée des bois, dans les clairières, sur les pentes 
des collines, nous rencontrons quelques Orchidées. Elles viennent 
spontanément : les unes, dans des sols incultes formés par la 
désagrégation des rochers ; les autres, dans des endroits humides, 
marécageux, au sol profondément humique. Ces Orchidées sont 
les humbles, les modestes de la famille : elles n’ont ni l'éclatante 
beauté ni la troublante senteur des fleurs tropi- 
cales. Seule, la bizarrerie ou l’étrangeté de leurs 
formes attire l’attention : tels sont l'épi compact 
aux petites fleurs roses de l’Anacampts pyrami- 
dalis (fig. 5, H); la grappe étrange, bizarre enlace- 
ment de filaments roses crépélés, spiralés de 
l'Himantoglossum hircinum (fig. 5, D). Il faut 
encore citer les Gymnadenia conopsea (fig. 109), 
viridis, albida, les Platanthera bifolia et montana 
(fig. 128), les Orchis Simia (fort rare), Morio, 
ustulata, purpurea, Rivini, coriophora, mascula, Fig. 221bis, — 
laxiflora et var. palustris, maculata (fig. 5, À), Sp er iER 
latifolia (fig. 106), de l'Aceras anthropophora  Sw. 

(fig. 49), les Cephalanthera xyphophyllum, grandiflora (fig. 155) 
et rubra, la plus belle de toutes, les Listera cordata et ovaia 
(fig. 42), le Goodyera repens, les Spiranthes. Le Malaxis paludosa 
(fig. 221), le Séurmia Loeselii (fig. 222), le Neottia Nidus-avis 
(fig. 101) dont nous avons décrit la singulière conformation et le 


Corallorrhiza innata aux rhizomes tortueux, coralliformes et aux 
feuilles écailleuses, appartiennent encore à la Flore belge. Signa- 
lons en terminant la présence dans les dunes de l’Ofhrys aranifera 
(fig. 105), et sur les coteaux herbeux, dans les bois montueux 
de la zone calcaire du pays(1), celle des Ophrys Arachnites 
(fig. 104), muscifera et apifera. 


(x) Les Orchidées tendent à disparaître des prairies quand celles-ci reçoivent 
régulièrement des fumures d’étable. 


— 326 — 


Orchidées françaises. — La France est plus riche : elle possède 
outre les Orchidées de la flore belge des représentants des 
genres suivants : Barlea (1), Nigritella (1), Coeloglossum (1), 
Herminium (1), Limodorum (1), Tinaea (1), Serapias (4), Saty- 
rium (1), Chamaeorchis (1). 

A ces genres, nous devons ajouter un ÉD le joli Cypri- 
pedium Calceolus qui, indiqué en Belgique au commencement du 
siècle, n’y a plus été retrouvé par les botanistes... du moins 
à l’état sauvage. En France, on le rencontre encore dans l’Est, 
le Jura, en Auvergne, dans les Pyrénées et les Alpes. 
M. E. G. Camus, publiant récemment une très intéressante 
Monographie des Orchidées de France (1), décrit 77 espèces bien 
déterminées et 78 hybrides spontanés mono- et bigénériques. 
Comme nous l'avons dit, ces hybridations multiples constituent 
la grande difficulté d’une classification rigoureuse; savoir s’il 
faut regarder une Orchidée comme une variété ou comme une 
espèce, est trop souvent, une question insoluble. 

Orchidées anglaises. — En Angleterre, le nombre des Orchi- 
dées indigènes est peu considérable. Le développement intensif 
de la culture a fait disparaître complètement quelques genres : 
le Cypripedium calceolus (fig. 224) entre autres ne s’y rencontre 
plus, ses anciennes stations, trop souvent explorées, par des 
collecteurs avides, ne voient plus s'épanouir les jolies fleurs au 
labelle jaune de ce charmant Cypripède. 

Nyman(2) a relevé en Angleterre 20 genres d’Orchidées : 
Cypripedium (1), Malaxis (1), ÆEpipactis (4), Spiranthes (2), 
Anacamptis (2), Coeloglossum (1), Ophrys (3), Corallorrhiza (1), 
Epipogon (1), Neottia (1), Goodyera (1), Gymnadenia (2), Saty- 
vium (1), Herminium (1), Liparis (1), Cephalanthera (3), Listera 
(2), Orchis (10), Platanthera (2), Aceras (1). La flore de l'Irlande 
nous offre deux Orchidées qui n’existent pas en Angleterre : 
Neotinea intacta et Spiranthes gemmipara ; mais nous n'y trouvons 
aucun représentant des genres Cypripedium, Anacamptis, Coral- 
lorrhiza, Epipogon, Goodyera, Herminium, Satyrium, Liparis, 
Aceras. 


(x) Monographie des Orchidées de France, par E. G. Camus. Paris, 1894. 
(2) Conspectus Florae Europeae. 


ar — 

Orchidées allemandes, etc. — En Allemagne, la Flore du Dr Au- 
guste Garcke nous révèle l'existence de vingt-trois genres. 
Celui qui présente le plus grand nombre d'espèces, les Orchis 
(16), nous offre un intérêt particulier en raison de l’infinie 
variété de ses formes (1). Les autres genres sont Gymnadenia (5), 
Platanthera (3), Nigritella (1), Ophrys (4), Chamaeorchis (1), Her- 
mintum (1), Anacamptis (1), Himantoglossum (1), Aceras (1), 
Epipogon (1), Limodorum (1), Cephalanthera (1), Epipactis (1), 
Listera (2), Neottia (1), Goodyera (1), Spiranthes (2), Corallor- 
rhiza (1), Sturmia (1), Malaxis (1), Microstylis (1) Cypripe- 
dium (1). En Autriche, presque tous les mêmes genres se 
retrouvent représentés par une ou plusieurs espèces. Nous avons 
à noter, outre de nombreux Orchis (25), une nouvelle espèce 
dans les genres Satyrium, Corallorrhiza, Sturmia, Barlaea, trois 
Serapias et deux Coeloglossum. 

En Russie, le nombre des genres (20) est un peu moins consi- 
dérable. Signalons en passant les quatre espèces de Cypripé- 
dinées de la Flore sibérienne, européenne et asiatique : C. Cal- 
ceolus L., C. macranthum Sw.,C.ventricosum Sw., C. guttatum Sw. 

Orchidées alpines européennes. — En Europe, la région alpine 
commence, suivant les contrées, à partir de 1,000 à 1,500 mè- 
tres et s’élève jusqu’à 2,800 mètres. Elle comprend cette 
ceinture de pâturages qui sépare la région des forêts de la 
limite des neiges éternelles. 

Le caractère dominant de la Flore alpine de ses régions est 
le nanisme. Nous le retrouvons dans les Orchidées des montagnes 
qui sont toutes très petites. L’Orchis alpina ne mesure que quel- 
ques centimètres de hauteur et sa hampe est pauciflore. Nous y 
retrouvons aussi la richesse de la floraison, l’éclat et la diversité 
des coloris de ces fleurs baignées d’air et de lumière. 

Elle serait longue, la liste des Orchidées croissant dans les 
stations élevées du Caucase, des Carpathes, des Pyrénées, des 
Alpes suisses, autrichiennes, bosniaques et serbes. Mais on 
indique souvent à tort comme Orchidées alpines, des Orchidées 
de plaines qui sans doute montent plus ou moins haut dans les 


(1) Voir Chapitre IX, 1re partie. 


— 328 — 


Alpes, mais ne sont pas des plantes alpines dans le vrai sens 
du mot. Dans son ouvrage si intéressant sur la flore alpestre 
de la Suisse, M. Correvon indique comme appartenant au 
groupe alpin le Cypripedium Calceolus L. et le Gymnadenia albida, 
qu'on rencontre souvent en dessous de 500 mètres d'altitude. 
Les vraies Orchidées alpines de la Suisse sont peu nombreuses : 
Orchis pallens L., O. sambucina L., O. globosa, L., O. Spitzelii 
Saut., Nigritella angustifolia Rich., Chamaeorchis alpina Rich., 
Listera cordata KR. Br. 

Orchidées du bassin méditerranéen. — Dans le domaine médi- 
terranéen, c'est-à-dire dans la région qui s'étend autour de la 
Méditerranée, limitée au nord par les Alpes et le Caucase, au 
sud par l’Atlas et les déserts de l’Afrique septentrionale, nous 
rencontrons une flore orchidacéenne bien plus riche que celle 
de l’Europe centrale. Toutes les espèces sont encore terrestres : 
la nature du climat avec ses longues sécheresses et ses grands 
écarts de température diurnes et nocturnes ne permettraient pas 
aux Orchidées épiphytes de se développer. Le plus grand nombre 
des genres européens ont leurs principaux représentants dans le 
bassin méditerranéen. 

Si nous dressons, en terminant, la liste des Orchidées euro- 
péennes de la zone tempérée boréale, nous rencontrons les genres 
suivants : Cypripedium (1), Calypso (1), Corallorrhiza (1), Sturmia 
(1), Malaxis (2), Epipogon (1), Limodorum (1), Cephalanthera (4), 
Epipactis (4), Neottia (1), Listera (2), Spiranthes (3), Goodyera 
(x), Serapias (6), Barlea (1), Orchis (39), Anacamptis (1), 
Nigritella (1), Gymnadenia (5), Platanthera (4), Cæloglossum (2), 
Neotinea (1), Satyrium (1), Aceras (à) (1), Habenaria (1), Ophrys 
(22), Chamaeorchis (1), Herminium (1). Comme nous l'avons fait 
remarquer déjà, un certain nombre d'Orchidées du domaine 
méditerranéen sont communes à l’Asie et à l'Afrique. Nous 
trouvons en Espagne 19 genres, en Italie 25, en Grèce 16. 
Les Ophrys dominent dans la Flore orchidéenne de ces régions; 
c’est de beaucoup le genre le plus riche, même en ne tenant 
aucun compte de ses nombreux hybrides. 


(1) L’Aceras longebracteata RcHB. f. n’est qu’une forme de l’Aceras 
anthropophora R. Br. (fig. 49). 


nn — 

V. DoMaAINE DES Liparis. — Le genre Liparis mérite une 
mention spéciale. Il comprend un nombre fort considérable 
d'espèces qui vivent dans les prairies humides et dans les maré- 
cages. On ne les cultive guère; leurs petites fleurs sont insigni- 
fiantes pour l’horticulteur. 

L’aire de dispersion des Liparis est extrêmement étendue ; elle 
couvre toute la zone tempérée boréale, les Indes, la Malaisie, 
les Mascareignes, l’Afrique 
du Sud et l’Amérique 
chaude. Une seule espèce 
est européenne, l’ancien Li- 
paris Loeselii (fig. 222), dont 
Reichenbach père a fait le 
genre Séurmia; cette cu- 
rieuse Orchidée habite les 
marécages tourbeux de 
l'Europe centrale et septen- 
trionale, de l’Amérique du 
Nord et des régions boréales. 

Une espèce canadienne, le 
Liparis liliifolia Rich. est 
parfois cultivée en plein air. 
On rencontre encore dans 
les cultures des jardins bo- 
taniques, le Liparis bituber- 
culata du Népaul, L. diodon, 
longipes, pendula des Indes, 
L. ferruginea de Penang, 
L. nervosa de la Chine et du 
Japon, L. angustifolia, com- 


pressa, crenulata, latifolia, 
minima,montana,mucronata, Fig. 222. — Sturmia Loeselii Ron. 
pallida, parviflora de Java, L. guineensis de Sierra Leone, L. Bow- 
keri de l’Afrique du Sud, L. gregaria des îles Mascareignes, 
L. elata de l'Amérique tropicale, L.cylindrostachya du Brésil, etc. 
Les Liparis croissent dans une terre humide où les mousses 
et les sphagnums se rencontrent en abondance. Certaines espèces 
des régions chaudes (L. tricallosa p. ex.), s’attachent au lit de 


feuilles mortes des forêts, plutôt qu’au sol qu’il recouvre. 


VI. DOMAINE DES Orcuis. — Ce genre occupe, dans l’hémis- 
phère boréal, une aire d'habitation fort considérable, mais il est 
limité à cet hémisphère. Il comprend près de cent espèces et un 
nombre infini de variétés(1). Presque toutes se rencontrent en 
Europe, dans l’Asie centrale et l'Afrique méditerranéenne : trois 
espèces semblent exilées, deux (2) dans l'Amérique du Nord (Orchis 
spectabilis L., et O. aristata Fischer), l’autre(3) aux îles Canaries 
(Orchis canadariensis Ldl.). Une quatrième, O. foliosa Soland., 
habite l’île Madère, mais cette île fait partie du domaine médi- 
terrannéen. Les Orchis croissent dans les marais et les prés 
humides ; on les rencontre dans les massifs montagneux du Cau- 
case et des Alpes à des altitudes de 700 à 2,000 mètres : O. glo- 
bosa. Parmi les espèces les plus septentrionales, on trouve en 
Sibérie l’O. salina, O. Morio, O.ustulata, O.militaris, O. maculata. 

L’Orchis fusca est la plus belle et la plus grande de nos espèces 
indigènes. Après elle, les plus jolies sont les Orchis latifolia; 
maculata superba (fig. 5, A), mascula, mailitaris, spectabilis. La 
plupart des Orchis vivent dans les endroits découverts : ils 
aiment le plein soleil, des prairies fraîches et nues, les coteaux 
des collines crayeuses où l’air se renouvelle sans cesse. Ceux 
qu’on cultive le plus souvent, sont les Orchis mascula, maculata, 
Morio et ustulata. L'Orchis militaris est l’un des plus difficiles 
à élever. 


VII. DoMaAINE DES OPHRrys. — Le genre Ophrys compte plus 
de 30 espèces. Son aire de dispersion enserre la Méditerranée 
et s’étend sur trois continents. On rencontre surtout ces curieuses 
Orchidées sur les collines calcaires du littoral méditerranéen; il 
n’est pas rare d'en voir des tapis fleuris dans les bois d’oliviers 


(1) A la différence des Ophrys dont quelques espèces sont soumises à 
l’autofécondation, tous les Orchis ont besoin de l'intervention des insectes. 

(2) Lindley ayant rapporté l’Orchis rotundijolia Pursh. au genre Platan- 
thera, nous n’avons plus à signaler que deux espèces d’Orchis américains. 

(3) Durand et Schinz dans leur excellent Conspectus Florae Africanae (p. 76), 
considèrent avec raison l'Orehis cordata Willd. comme un Habenaria : 
H. diphylla. 


en Italie. Les Ofhrys Bertolonii Moretti, fusca Link, lutea Cav., 
tenthredinifera Willd., Scolopax Cav. (fig. 223) appartiennent 
exclusivement à la région méditerranéenne. Ce dernier souvent 
confondu avec des espèces affines, a été indiqué par erreur en 
Orient; il reste une des espèces caractéristiques de l’Europe 
austro-occidentale. Quelques espèces telles que ©. Arachnites 
Murr. (fig. 104), aranifera Huds., apifera Huds. et muscifera 
Huds. s’avancent beaucoup plus au nord dans les Alpes, le Jura, 
l'Europe centrale et occidentale et en Angleterre. L'Ophrys mus- 
cifera est le plus septentrionale de ces espèces. Elle couvre la 
péninsule scandinave, à l'exception de la région arctique. 

Les Ophrys recherchent l’air et la lumière : leurs racines 
s’enfoncent dans la terre, mais leurs feuilles et leurs fleurs 
aiment un éclairage in- 
tense et un air sans cesse 
renouvelé. 


VIII. Domaine pes Cy- 
PRIPEDIUM. — Si nous : 
entendions le nom de Cy- Z Z 
pripedium dans le sens 
que lui donnent les hor- 
ticulteurs c’est-à-dire 
comme synonyme de Cy-: 
pripédinée, ce n’est pas à 
cette place qu'il convien- Fig. 223. — Ophrys Scolopax Cav. 
drait d’en parler; car, les rares Cypripédinées de La zone tem- 


pérée sont moins intéressantes que celles des contrées plus 
chaudes. Mais nous prenons le nom de Cypripedium avec sa 


A 


valeur générique, c’est-à-dire opposé à Paphiopedium et à 
Selenipedium (1); dès lors, c’est ici qu’il convient d'étudier la 
géographie de ce genre. 


(x) Ascherson a proposé le premier de rectifier les noms de Cypripedium et 
de Selenipedium en les écrivant Cypripedilum et Selenipedilum; l’usage n’a 
pas admis ces changements, malgré la haute autorité de Pfitzer. Du moment 
qu’on admet Cypripedium et Selenipedium, n'est-il pas illogique de dire 
Paphiopedilum ? C'est le motif qui nous a fait préférer le terme Paphuopedium, 
bien qu'il soit défectueux au point de vue étymologique. 


— 332 — 

Les Cypripedium comptent une vingtaine d'espèces, dont 
quinze environ sont cultivées. Pftzer les a répartis en trois 
sections : les Eucypripedilum, les Trigonopedilum et les Arietinum. 
Le type de cette dernière section est le C. arietinum (fig. 13, A), 
dont les sépales pairs ne sont point soudés. Les Eucypripedilum 
se subdivisent en wultiflores dont le type est le C. californicum, 
en pauciflores, les plus nombreux, ayant des fleurs à sépales 
pairs entièrement coalescents. Leurs feuilles nombreuses sont 
distribuées en hélice, comme chez le C. Calceolus (fig. 224). 
Dans le groupe des diphylla, les sépales pairs sont encore 
coalescents, et les feuilles réduites à deux deviennent opposées : 
C. japonicum (fig. 13, B). 

L’aire de dispersion des Cypripedium est fort étendue; elle 
va de l'extrême Orient à l'extrême Occident. L’aire la plus vaste 
appartient sans contredit au C. Calceolus (fig. 224), surtout si on 
lui rattache sa forme japonaise, le C. Atsmorii, et sa forme 
américaine, le C. pubescens. Les C. macranthum, ventricosum et 
guttatum sont également des espèces de l’Ancien Monde : elles 
croissent dans les bois humides de la Sibérie. Quelques espèces 
deviennent très rares, tels sont le C. guttatum Sw., charmante 
Cypripédinée à fleurs blanches maculées de cramoisi, et le C. Cal- 
ceolus, le joli Sabot de Vénus, jadis si abondant en Suisse et dont 
M. Correvon;, le dévoué protecteur des plantes alpines, prévoit, 
hélas ! la disparition très prochaine. 

En Amérique, les espèces sont plus nombreuses : nous y trou- 
vons le C. arietinum (fig. 13, A), originaire du Canada, où le 
peuple lui a donné le nom de tête de mouton. Il voit dans l’aspect 
des diverses pièces du périanthe les cornes et les oreilles de cet 
animal. Nous trouvons encore le C. acaule, originaire du Nord-Est 
des États-Unis; le C. californicum, espèce rare, originaire de 
l’Orégon et de la Californie. Dans les Montagnes Rocheuses, on 
rencontre une espèce plus vigoureuse, mais moins belle, le 
C. montanum ou C. occidentale. 

Dans la partie occidentale des États-Unis, les flores spé- 
ciales nous indiquent la présence du C. candidum, hôte des 
prairies argileuses, tandis que, dans la partie orientale et sep- 
tentrionale, nous trouvons les C. parwiflorum, pubescens, deux 


espèces à fleurs jaunes, proches parentes du C. Calceolus, et le : 


ME CE 
fort joli C. spectabile (fig. 225). Cette dernière espèce est très 
répandue. Son aire est fort étendue dans toute l'Amérique sep- 
tentrionale; on la rencontre à l’orée des bois, croissant en 
colonies nombreuses dans des stations toujours abritées du soleil ; 
elle y développe ses racèmes mono- bi- et triflores, aux fleurs 


Fig. 224. — Cypripedium Calceolus L. 


remarquables par leur volumineux labelle ayant la coloration 
d'une pêche mure; les poils qui recouvrent ses feuilles contien- 
draient, d’après un professeur américain, D. T. Mac Dougal, 
dans leur cellule terminale un liquide brunâtre, causant une vive 


mie er 


irritation de la peau. C'est encore aux États-Unis que nous 
trouvons le minuscule C. acaule; sa taille ne dépasse pas 020. 
C’est un des rares Cypripèdes qui supporte l’action directe des 
rayons du soleil. | 

Au Mexique, nous rencontrons à une altitude assez élevée 
(900 à 1,200 mètres) l'habitat le plus méridional d’un Cypripe- 
dium, celui du C. Irapeanum, dont la fleur semble une forme 
gigantesque du C. calceolus, à coloris jaune vif. Il hiverne dans 
le sol; réduit à ses racines, ce Cypripedium subit une période de 
repos très marquée. Comme Ia plupart des Cypripèdes, il croît 
dans une argile calcaire compacte. 

En Asie, un petit nombre d'espèces s'étendent dans le Sud 
jusqu'aux Monts Himalayens; au Japon, apparaissent quelques 
formes locales; le C. cardiophyllum, le C. debile, le plus petit du 
genre et une autre espèce diphylle fort remarquable, le C. japo- 
nicum (fig. 13, B) dont nous nous sommes déjà occupé. Ce dernier 
présente un caractère tout particulier, à raison de ses feuilles 
étalées en éventail. Sa fleur se distingue par un grand labelle 
blanc à reflets verdâtres, pointillé et maculé de pourpre en forme 
de boule; il habite la région boisée et montagneuse des environs 
de Yedo. 


IX. CONFINS DES RÉGIONS CHAUDES DANS L'HÉMISPHÈRE 
BORÉAL. — A la lisière sud de la zone tempérée boréale, nous 
trouvons encore des Goodyera, des Habenaria, des Epipogon, 
des Herminium, des Liparis, des Serapias, des Cephalanthera, 
des Ophrys, des Corallorrhiza et des Cypripédinées. Mais, ces 
dernières n’ont plus les feuilles caduques : le feuillage persistant 
des Paphiopedium nous révèle un climat moins âpre, une période 
d’hibernation moins longue et moins rigoureuse. Aussi voyons- 
nous apparaître, à côté des genres ci-dessus, de nouveaux 
genres dont nous rencontrerons plus tard de nombreuses espèces 
dans les zones tropicales. Bornons-nous à signaler au Japon 
l'apparition des Calanthe, des Dendrobium, des Arethusa, des 
Cremastra, des Galeola, du Lepidogyne, du Leucorchis, du Bletilla, 
du Bletia, des Phajus et des Spathoglottis. Nous retrouvons en 
Chine des représentants de ces trois derniers genres. Puis, 
apparaissent diverses espèces d’'Acampe, d’Aerides, d'Haemaria, 


re 
de Pholidota, de Renanthera, de Sarcanthus, de Tainie et de 


Thelasis. Le domaine himalayen compris dans cette zone nous 


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| 


| 


Fig. 225. — Groupe de Cybribedium shectabile au Jardin botanique de Birmingham. 
offre un Tipularia séparé de son congénère de l’Amérique du 
Nord par la moitié d’un hémisphère, puis des Orchidées intéres- 


= 


sant plus le botaniste que l’horticulteur. Presque toutes descen- 
dent jusqu’en Birmanie; citons l’Anthogonium, l’Acrochæne, 
le Sunipia, les Oltochilus, les Pachystoma et les Panisea, ces 
pseudo-Cæœlogyne. 

En Amérique, les Orchidées épiphytes sont encore rares dans 
cette zone; à côté de quelques formes nouvelles comme l’Aplec- 
trum hiemale Nutt. et l'Hexalectris aphylla Rafin. des États-Unis 
méridionaux et du Mexique, nous trouvons l’Epidendrum conop- 
seum, la première des Orchidées vraiment épiphytes que nous 
rencontrions (32° lat. N.) dans l'hémisphère boréal. 


X. DOMAINE DES PLATANTHERA. — Ce genre que Bentham a 
réuni à tort, croyons-nous, aux Habenaria, compte trente-cinq 
espèces. Il est surtout bien représenté dans l’Amérique boréale; 
nous en trouvons 18 espèces croissant à la fois au Canada et aux 
États-Unis, et 6 espèces propres à ‘ce dernier pays, mais son 
aire s'étend bien au-delà de cet immense territoire. Le PI. hyper- 
borea croît au Groenland et en Islande. Les PL. chlorantha, 
solstitialis et obtusata vivent en Europe. Les Pl. ophryoides et 
sakhalinensis dans l’île Sakhalin. Au sud on voit le genre Platan- 
thera représenté au Mexique par les PI. Ghiesbreghtiana et 
vulcani, et dans l'Afrique par le Pl. Preussii Kränzl. découvert 
en septembre 1891, par le D' Preuss, à 2,500 mètres d'altitude 
dans la chaîne des monts Kameroun. 


XI. AIRE DES HABENARIA. — Ce genre, qui ne compte pas 
moins de 350 espèces, a des représentants nombreux sur tous les 
points des zones subtropicales et tropicales. 

En Amérique, environ cent et quarante espèces sont dissémi- 
nées depuis la Caroline où l’on rencontre l’Habenaria repens 
Nutt., jusqu’au Chili austral où croît l’H. pumila Pœpp. A lui 
seul, le Brésil en possède cinquante-neuf espèces. 

L'Afrique compte plus de cent et soixante espèces d’Habe- 
naria, disséminées depuis les îles du Cap vert (H. petromedusa), 
les Canaries (H. tridactylites Ldl.), Sierra-Leone (H. Wilfordir 
Ridl.), l’Abyssinie (espèces nombreuses) et le Kilima N’djaro 
(H. pleistadenia Rchb. f.), jusqu’au Cap où le genre est abondam- 
ment représenté ainsi que dans les Mascareignes. 


XXII 


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L’Asie tropicale et australe possède une centaine d'espèces ; 
ce genre a des représentants non seulement dans les grandes 
îles de la Sonde, mais jusque dans les petites îles océaniques, 
telles que les Nouvelles Hébrides (H. stenodon Rchb. f.), 


les îles Viti (H. tradescantifolia Rchb. f.) et l'île Tahiti 
(H. cryptostyla Rchb. f.). 


XII. ORCHIDÉES CHINOISES ET JAPONAISES. — Divisée par de 
hauts plateaux et d'anciens fonds de mer, privée de pluies sur 
de vastes étendues, la partie centrale de l'Asie, sauf peut-être 
quelques localités thibétaines, ne présente aucune des conditions 
biologiques réclamées par l’Orchidée; il est même probable 


Fig. 226. — Racème du Cælogyne ocellata Lo. var. maxima Rous. f. 


qu’on rencontrera bien peu d'Orchidées nouvelles dans le nord 
du Tibet et dans l'Asie centrale jusqu'au désert de Kobi. Ces 
contrées immenses — près de ro millions de kilomètres carrés — 
forment entre les flores des contrées limitrophes une barrière plus 
infranchissable que les lacs et les océans. 

La flore des régions orientales — flore des Camellia et des 
Azalées — est bien différente de celle de l'Europe et de l'Asie 
occidentale.Nous ne connaissons guère la flore de la partie austro- 
occidentale de l’Empire Chinois, ni celle de cette partie du 
royaume de Kashmir connue sous le nom de Tibet des abricots; 


22 


il serait bien étonnant de ne point trouver d'Orchidées dans 
ces vallées profondes, s’ouvrant comme des fossés géants entre 
les monts neigeux de l'Himalaya et du Karakoroum. 

Cent et onze Orchidées ont été jusqu’aujourd’hui signalées en 
Chine; quarante et une espèces (1) semblent propres à la flore de 
ce pays. Une espèce, le Renanthera coccinea (fig. 135) ne s’y 
rencontre qu'à l’état cultivé. Trois Orchidées sont communes à 
l’Europe et à la Chine (Epipactis latifolia, Herminium monorchis, 
Gymnadenia conopsea). Les autres espèces ont des aires de disper- 
sion moins étendues. Tenant compte de ce fait qu'au sud de 
l'estuaire chinois, tout le littoral est dans la zone tropicale, il 
n’est pas surprenant d'y rencontrer des Orchidées semblables à 
celles de l’Insulinde. 

Le Japon, pays merveilleux et fantastique dont la plante en 
fleurs envahit même le blason, renferme des représentants de 
trente-six genres d’'Orchidées (2). Étant donnée sa latitude septen- 
trionale, ce pays, malgré son climat maritime, ne peut être la 
terre d’élection de l’Orchidée. Dans cette flore si riche, cette 
famille occupe un rang très secondaire: 82 Orchidées seulement 
figurent parmi les 2,406 plantes japonaises citées par MM. Mat- 
sumura et Yatabe. Le plus grand nombre de ces espèces (61) 
sont propres au Japon; les autres (21) ont une aire plus étendue; 
elles envahissent la Chine, quelques-unes le Népaul et le Sikkim, 
d’autres l'Amérique du Nord, une enfin, le Spirantes australis, 
gagne les Indes, Ceylan, l’Indo-Chine, Java, l’Australie et la 
Nouvelle-Zélande, c'est à dire qu’on la rencontre dans près de la 
moitié du globe! 

A mesure que nous descendons vers l'équateur thermique, les 
Orchidées se rapprochent des types de la flore tropicale. Plusieurs 
espèces rencontrées au Japon dans la partie méridionale de la 
province de Kii ou dans d’autres parties chaudes, rappellent les 
Orchidées indiennes : citons comme exemple le Phajus flavus 


(x) Liparis (2), Dendrobium (2), Bulbophyllum (3), Cirrhopetalum (1), 
Calanthe (3), Eria (3), Pachystoma (1), Tainia (2), Cœlogyne (1), Pholidota (1), 
Arundina (1), Cymbidium (1), Cottonia (1), Renanthera (1), Acampe (1), 
Cleisostoma (1), Sarcanthus (3), Tropidia (1), Spiranthes (1), Cystorchis (1), 
Pogonia (2), Habenaria (5), Hemipilia (2), Cypripedium (1). 

(2) NiPPON. Shokubutsumaii. Tokio, Z. P. Maruya, 2544. 


30 — 


dont la forme japonaise est presque identique à celle de Java (1). 


XIII. DoMaINE DES CŒLOGYNE. — Les Cæœlogyne, dont nous 
cultivons dans nos serres de fort jolies espèces (C. barbata, 
corymbosa, cristata (fig. 207), elata fimbriata, flavida. fuliginosa, 
fuscescens, graminifolia, ocellata (fig. 213 et 226), ochracea, 
odoratissima, Parishii etc.) appartiennent pour le plus grand 
nombre à la Flore himalayenne, spécialement à celle du Sikkim 
et du Népaul. Elles se plaisent à des altitudes dépassant 1,300 et 
s'étendant jusque 2,500 mètres(C.asperata, Dayana, Massangeana, 
pandurata, speciosa,tomentosa, elata (à Tongloo, près de Darjeeling), 
fimbriata, fuliginosa, ocellata, ochracea). Elles croissent dans les 


DT re 
Fig. 227. — Pleione humilis Dox. 


détritus végétaux, exposées parfois au plein soleil, plus souvent 
à la lisière des bois, protégées par le feuillage des broussailles. 
Quelques espèces appartiennent à la flore indo-malaise. L’aire 
de dispersion de certaines d’entre elles est fort étendue. Le 
C. asperata s'étend dans tout l’Archipel malais depuis Sumatra 
jusqu’à la Nouvelle-Guinée. Les unes habitent les monts Nil- 
ghiris dans l'Inde méridionale et les monts Newera Ellia dans 
l’île de Ceylan comme le C. odoratissima; d'autres se rencon- 
trent dans les jungles les plus chaudes de Bornéo, dans des 


(x) Zconographia Flora: japonicas par R. YATABE, Tokio, 1893. 


HAE 

contrées que les fleuves et les rivières inondent périodiquement, 
comme les C. asperata, Dayana, pandurata et Parishii. L'espèce 
monotype d’un genre voisin, le Neogyne Gardneriana (fig. 211) 
habite les monts Khasya, patrie de nombreux Cœlogyne. Presque 
toutes les espèces croissent sur les arbres, dans des endroits 
ombreux, à proximité des cascades et des chutes d’eau dont les 
embruns environnent la plante d’une humidité constante. 


XIV. AIRE DES PLEIONE. — Les Pleione, ces Orchidées que 
plusieurs botanistes regardent comme formant une section des 
Coelogyne, sont par excellence des Orchidées alpestres : ils 
aiment à gravir les montagnes, s’emparant des rochers garnis 
de mousse ou des troncs d’arbres touffus. Ils croissent aussi 
bien à l'ombre qu’en pleine lumière. On les rencontre surtout 
dans la zone himalayenne (P. Hookeriana, humilis, lagenaria, 
maculata, praecox) à partir de 800 jusqu’à 3,300 mètres d’altitude. 
Dans la chaîne des monts Khasya et dans les montagnes de 
l’Arracan et du Moulmein, leurs habitats ne dépassent guère 
2,300 mètres (P. Reichenbachiana). Naturellement, la tempéra- 
ture moyenne varie d’après l’altitude de la station. Les Pleione 
humilis (fig. 227) et Hookeriana habitent des stations alpestres 
où la moyenne de la température varie de 5 à 8° C, tandis 
que le P. Reichenbachiana croît, nous dit le Colonel Benson, 
dans des stations dont la température moyenne s’élève à 
18-219 C. Partout, la saison de pluie est intense; la terre 
et l’air sont imbibés et pénétrés d'eau. La saison sèche ne 
dure que trois mois, de décembre en février; pendant ces mois 
le Pleione perd ses feuilles (1); il repose comme nos plantes 


indigènes en hiver. 


XV. ZONE CHAUDE BORÉALE. — La zone chaude boréale 
s'étend à partir de la zone douce jusqu'à la zone torride. Elle 
comprend les contrées dont la température moyenne atteint 
20 à 25°C. Dans cette zone, les Orchidées sont nombreuses; 
elles abondent dans les îles Philippines, la partie nord des 


(1) Quelques rares espèces (P. Hookeriana) conservent leurs feuilles toute 
l’année. 


= — 
Indes Orientales, le Mexique et Cuba, la reine des Antilles. En 


[\ 


Asie, nous rencontrons les Acampe, Acriopsis, Aerides, Calanthe, 


ii 


Camarotis, Ceratostylis, Cryptochilus, Cymbidium, Cyriopodium, 
Dendrobium, Dendrochilum, Diothonea, Diplomeris, Dipodium, 
Eria, Esmeralda, Galera, Gastrodia, Glossula, Herpysma, Tone, 
Nephelaphyllum, Nervilia, Odontochilus, Oiochilus, Phalaenopsis, 
Pholidota, Preptanthe, Renanthera, Stauropsis, Taeniophyllum, 
Thelasis, Trichosma, Vanda. Nous trouvons beaucoup de repré- 
sentants africains de ces genres. En Afrique un ZLimo- 
dorum et un Obhrys, aux îles Canaries, un Orchis, apparaissent 
comme un dernier souvenir des Orchidées européennes. Nous 
y rencontrons encore un genre africain, les Holothrix. En 
Amérique, le nombre des genres augmente d’une manière consi- 
dérable. A côté de ceux qui n’intéressent que les botanistes, 
Abola; Cryptarrhena, Dendrophyllax, Seraphyla, Stenoptera, 
Wullschlaegelia, à côté de genres curieux à des titres divers, 
tels que les Dignathe, les Diacrium (fig. 152), les Erycina, les 
Lacaena, les Mormodes (fig. 228), les Octadesmia, les Ociomeria, 
les Ponera, nous rencontrons dans cette région, de superbes 
Orchidées dont les fleurs seront toujours recherchées : les 
Arpophyllum, les Brassavola, les Brassia, les Catasetum, les 
Stanhopea, les Chysis, les Epidendrum, les Oncidium et les admi- 
rables Cattleya et Laelia. 

Dans les îles Sandwich réapparaît la flore asiatique représentée 
par les Taeniophyllum et les Microstylis. 


XVI. DOMAINE DES AERIDES. — A l’exception des régions 
arides de l’Indoustan septentrional occidental et du plateau 
desséché du Deccan où ne vit aucune Orchidée, les Aérides se 
rencontrent dans toute la région Indo-Malaise, disséminés, il 
est vrai, dans des localités fort éloignées. Ces plantes croissent 
un peu partout: dans les grandes îles telles que Célèbes, 
Sumatra, Bornéo, Java (A. virens, A. Huttonii), comme dans les 
îles Philippines (A. Augustianum, Lawrenceae, Quinque vulnera), 
les petites îles Andaman (4. Ermerici); dans l’Assam, le Siam, 
le Moulmein (A. crassifolium, mitratum), la presqu'île de Malacca 
(A. suavissimum), comme en Cochinchine (À. multiflorum, odora- 
tum) et dans l’Inde anglaise (A. crispum et ses variétés, falcatum, 
Fieldingit, maculosum, radicosum). Elles trouvent, dans tous leurs 
habitats, l’air saturé d'humidité et une température élevée à 


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moyenne constante, présentant une différence tout au plus de 9° C 
entre les heures les plus chaudes du jour et les heures les 
plus froides de la nuit, celles qui précèdent le lever du soleil, 


Fig. 229. — Paphiopedium philippinense Prirz. 


Les Aerides multiflorum et odoratum ont l'aire de dispersion 
le plus étendu : le premier s’étend dans les vallées profondes 
et basses de l'Himalaya, depuis Kumaon jusqu’à Assam dans la 


MID 

Birmanie; ils irradient aux îles Andaman et en Cochinchine:; le 
second occupe des habitats nombreux dans toute la péninsule 
indienne et en Cochinchine. 

Nous avons déjà indiqué au Japon la présence de l’Aerides 
japonicum, ce représentant égaré de la flore malaise; nous 
devons signaler au même titre l’altitude élevée (1,700 mètres) où 
croît l’Aerides Vandarum (fig. 93), qu’on trouve au Sikkim, dans 
les monts Khasya et à Manipour. Ces deux espèces ont natu- 
rellement besoin de moins de chaleur que leurs congénères. 

Les Aérides s’établissent sur les troncs et les branches 
d'arbres vivants; il est fort rare de les trouver sur des arbres 
morts ou abattus. Ils recherchent le voisinage des cours d'eau, 
étant aussi avides d’humidité que d’ombre et de chaleur. Ils 
sont en végétation depuis le mois de mars jusqu’en octobre, et 
donnent leurs fleurs pendant la saison des pluies. 


XVII. AIRE DES CALANTHE. — Nous ne parlerons ici que 
des Calanthe tels que Pfitzer les a définis, c’est-à-dire de ces 
Orchidées dont le Calanthe veratrifolia (fig. 22) est le type. A la 
différence des Preptanthe, toutes ces espèces sont à feuilles 
persistantes. Leur aire de dispersion est fort étendue dans la 
région orientale du globe. On rencontre les Calanthe au Cap, en 
Chine, au Japon, à Java, à Ceylan, dans les Monts Nilghiris, 
en Cochinchine, au Cambodge, au Siam, dans l'Australie 
et dans la Nouvelle Calédonie. 

A l'exception de l’Afrique qui ne possède qu’un Calanthe, 
C. natalensis, le C. veratrifolia croît dans tous les autres pays. 
La limite australe de son domaine se trouve aux environs de 
Sydney, dans la Nouvelle-Galles du Sud. Cette Orchidée est 
d'humeur facile; dans la Nouvelle-Galles du Sud, elle vit le 
long des fleuves, dans des terres meubles et dans des détritus 
végétaux si désagrégés que les plantes s’enlèvent à la main, 
avec toutes leurs racines. 

Le Calanthe veratrifolia (fig. 22) a produit d'innombrables 
variétés ; la plus septentrionale croît au Japon et, comme toujours, 
c’est la forme naine du groupe : C. v. var. Textorer. Il en est de 
même du C. natalensis dont nous avons indiqué la présence en 
Afrique, près de King William's Town : cette Orchidée s'étend 


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sous des formes diverses jusqu’au Japon (C. #. var. pleiochroma) 
à travers les îles Mascareignes (C. #. var. sylvatica), les Indes et 
la Cochinchine. 

La patrie des Calanthe n’est pas, on le voit, limitée à l’habitat 
du Calanthe veratrifolia. Plus de quarante espèces sont répandues 
dans les autres parties du monde, dans les îles Mascareignes, 
l’Afrique tropicale, l'Amérique centrale, les Indes Occidentales 
et le Mexique. Le Népaul a enrichi nos serres des Calanthe 
Masuca et brevicornu; le Japon nous a donné le C. tricarinata; 
les îles Philippines, le C. furcata; l’Afrique enfin nous a envoyé 
le C. natalensis, etc. Tous les Calanthe ont pour habitats des 
localités à sol profond, humide, riche en humus, où l'atmos- 
phère est humide pendant la période de leur végétation. 


XVIII. DOMAINE DES EPIDENDRUM. — De toutes les Orchidées 
américaines, les Epidendrum nous offrent l’aire de dispersion la 
plus étendue. Ce genre étend son domaine depuis Port Royal 
dans la Caroline du Sud (32° lat. N.), où l'on rencontre l'Epiden- 
drum conopseum, jusqu'au tropique du Capricorne(1). Plus de 
quatre cents espèces occupent cet immense territoire : leurs 
stations sont surtout multipliées dans les chaînes de montagnes 
qui, du Mexique jusqu’en Colombie, figurent la colonne verté- 
brale de la partie isthmique de l'Amérique centrale. 

Les Epidendrum tampense et conopseum ont les habitats les 
plus septentrionaux : on les trouve au sud des États-Unis. 

Sur le plateau mexicain et dans les montagnes des Indes 
Occidentales, les Epidendrum sont par excellence les Orchidées 
dominantes. Leurs touffes vigoureuses enserrent les arbres 
sous leur abondante végétation et y développent de luxuriantes 
floraisons. 

En général l’altitude de leurs stations est moyenne; c’est 
celle des Cattleya et des Laelia (1,000 à 1,230 mètres). 
Quelques Epidendrum toutefois escaladent les hautes mon- 
tagnes comme l’Epidendrum frigidum qui croît à 4,300 mètres. 


au 


Plusieurs Epidendrum, à fleurs plus petites, ont une aire de 


(1) Une espèce, l’Epidendrum spicatum, est endémique aux îles Galapagos; 
c'est la seule Orchidée de ces îles. 


mn 

dispersion fort étendue. L'Epidendrum ciliare (fig. 81) s'étend 
sur toute l'Amérique tropicale entre le 5"° et le 20% degré de 
latitude Nord. Les espèces habitant les îles des Indes occi- 
dentales sont bien remarquables par le polymorphisme de leurs 
tiges, de leurs inflorescences et de leurs feuilles. Nous citerons 
particulièrement les E. fragrans, E. variegatum, E. atropurpu- 
reum, E. cochleatum(i). Certaines espèces, comme l'E. frigidum, 
ont des stations disjointes : la Sierra Nevada de Merida dans le 
Vénézuela et le volcan de Pasto au Pérou. 

Au Brésil et à la Guyane les Epidendrum sont encore très 
nombreux : la chaîne des Orgues et la Sierra de Minaes Geraes 
sont la patrie de quelques-unes de nos plus belles espèces 
cultivées. 

Il n'est pas rare de rencontrer diverses espèces d’Epidendrum 
fleurissant côte à côte : les Epidendrum alatum et E. Stam- 
fordianum (fig. 231) vivent en bons voisins dans le Honduras; 
Edouard André découvrit en 1876 l'E. arachnoglossum sur le 
volcan de Puracé (N1!: Grenade) croissant sur des arbres à côté 
de l’E. paniculatum. 

Les plus belles Orchidées de ce groupe ont été découvertes 
par Descourtilz, Ruiz et Pavon, Jacquin, Elcock, Hinton à la fin 
du siècle dernier, par Humboldt et Bonpland au commencement 
du siècle, et plus récemment par Drummond (1810), Gardner, 
D' Schomburgk, Hartweg (1837), Salzmann (1840), Karwinski 
(1840), Linden (1842), Warscewicz (1848), Wagner (1850), 
Endres (1871), Gustave Wallis (1874), Éd. André (1876) et 
surtout par Ure Skinner (1835-1874). 


XIX. AIRE Des Cuvysis. — Les Chysis sont tous américains : 
leur aire de dispersion s’étend du Mexique à la Nouvelle Grenade. 
Ils croissent suspendus par leurs racines aux branches des arbres; 
leurs tiges adultes sont inclinées vers le sol (fig. 162). On les 
rencontre à l'orée des bois, le long des cours d'eau, dans les 
vallées des montagnes, à des altitudes assez élevées. Les espèces 
les plus remarquables sont le Chysis aurea et sa variété Lim- 


(1) Une des rares Orchidées épiphytes connues de Linné. 


aus au 
minghei, le C. bractescens et le C. laevis. Le magnifique Chysis 
Chelsoni (fig. 232) est un hybride horticole obtenu, paraît-il, 


du C. bractescens (fig. 162) et du C. laevis; ses fleurs jaunes 
nous offrent un superbe labelle tacheté de cramoisi. 


XX. ZONE TROPICALE OU ÉQUATORIALE.— Cette partie du globe 
située entre les lignes isothermiques de + 25°, presque parallèles 
à l’Équateur thermique, nous offre l'Orchidée dans ses manifes- 


Fig. 230. — Paphiopedium Hookerae PFITz. 


tations les plus brillantes et les plus variées. Les espèces carac- 
téristiques ou intéressantes abondent surtout dans les stations de 
la zone tropicale dont la température est extrêmement uniforme : 
32° à 35° C pendant le jour,et 23°C pendant la nuit. De fréquentes 
ondées entretiennent une abondante humidité qui permet à la 
plante de prendre un développement extraordinaire. Le sud de 
l’Inde, la presqu'île de Malacca, les îles de l’Archipel malais, le 
nord du Brésil, l’Isthme de Panama, la plupart des Antilles, 


nd 


sont, dans cette zone, les centres orchidéens les plus importants. 
Ce sont des terres échancrées par l'Océan ou traversées par des 
rivières et des fleuves dont la largeur évoque chez le voyageur la 
pensée de vastes bras de mer. A cette configuration générale, 
déchiquetée, amincie de ces territoires, est due la répartition 
des domaines. Partout où le climat est soumis à des précipi- 
tations aqueuses, partout où l’air se trouve chargé d’humidité 
par le voisinage de mers, de lacs, ou de vastes cours d’eau, 
l’Orchidée abonde. Dans cette zone, nous rencontrons en Asie 
et en Amérique deux territoires, placés presque aux antipodes; 
ils semblent les métropoles de la famille orchidéenne. Les 
plaines littorales étroites où se dressent les crêtes d'une chaîne 
cotière, comme le rivage brésilien de Rio à Bahia et comme 
les terres de l’isthme de Panama, sont le premier de ces centres. 
L’autre occupe les Indes orientales méridionales, le vaste Archi- 
pel indien dont Java, Bornéo, Célèbes et Sumatra sont les îles 
principales, véritables Édens où l’Orchidée se développe dans 
toute sa beauté, sa richesse et sa puissance. Nous lasserions la 
patience du lecteur le plus attentif si nous citions les noms de 
toutes les espèces recueillies et décrites dans cette partie du 
monde, où la plante trouve la vie abondante et facile sous un 
ciel de feu et dans l’incessante décomposition des matières 
organiques. 


XXI. ORCHIDÉES DE L'ASIE TROPICALE ET INSULAIRE. — 
Poursuivant notre voyage, nous rencontrons le Domaine des 
moussons tropicales de Grisebach (Inde méridionale et îles de 
la Malaisie). Certains genres : Eria (plus de 100 espèces), 
Caælogyne (plus de 70 espèces), Saccolabium (20 espèces) sont 
propres à ce domaine. 

La péninsule cisgangétique, une des contrées les plus chaudes 
du globe, nous offre l’admirables pectacle de la plus intarissable 
fécondité. Dans ces plaines, où les végétaux trouvant la terre 
trop étroite, chevauchent les uns sur les autres, où 

Dans l’air tiède et subtil brusquement dilaté 


S’épanouit un flot d’odeurs fortes et douces, 
Plein de fièvre et de volupté, 


la famille des Orchidées constitue, surtout dans le territoire des 


i-). | can 
monts Khasia, la famille végétale la plus nombreuse et la plus 
éclatante. C’est là que Griffith découvrit, en 1837, croissant sur 
des branches dénudées d’un Gordonia, au milieu de forêts de 
Chènes et de Pins, près du village indien de Lermaï, l'Orchidée 
que Lindley appelait la plante la plus glorieuse de la race la 
plus noble des Indes, le Vanda cœrulea (fig. 131). 

Au premier rang des genres propres à cette région, nous ren- 
controns les Dendrobium(330 espèces), qui, particuliers à la flore 
asiatique, poussent néanmoins des irradiations vers le nord 
(Japon) et vers le sud (Australie), mais dont on ne trouve aucun 
représentant en Amérique, en Afrique, ni en Europe. 

1270 espèces d'Orchidées croissent, d’après Hooker, dans les 


: RS ES 

Fig. 231. — Efpidendrum Sondes Bart. (Plante et fleur). 
Indes anglaises. Elles appartiennent à 115 genres : Acanthe- 
phippium BI. (3), Acrochaene Ldl. (1), Acriopsis Rwdt (3), 
Aerides Lour. (15), Agrostophyllum BI. (6), Anœæctochilus B1. (7), 
Anthogontum Ldl. (4), Aphyllorchis BI. (4), Apostasia Bl. (3), 
Appendicula BI. (10), Arachnanthe BI. (5), Arundina Bl. (7). 
Bromheadia Ldl. (2), Bulbophyllum Thou. (85), Calanthe Br. 
(36), Cephalanthera Rich. (1), Ceratostylis BI. (7), Chetrostylis 
BI. (6), Chrysoglossum BI. (4), Cirrhopetalum Ldl. (34), 
Claderia Hook. f. (1), Cleisostoma BI. (15), Coelogyne Ldl. 
(57), Collabrum BI. (1), Corallorrhiza BI. (1), Corymbis Thou. 
(4), Corysanthes Br. (2), Cottonia Wight. (1), Cremastra Lidl. 
(1), Crybtochilus Wall. (2), Cryptostylis Br. (1), Cymbidium 


0 — 
Sw. (15), Cyperorchis BI. (3), Cystorchis BI. (2), Dendrobium Sw. 
(164), Dendrochilum BI. (5), Didymoplexis Griff. (1), Diplocentrum 
Ldi. (2), Diplomeris Don (2), Dipodium Br. (2), Disperis Sw. (2), 
Doritis Ldl. (3), Drymoda Ldl. (1), Epipactis Br. (3), Epipo- 
gon Gmel. (2), ÆEria Ldl. (95), Eulophia Br. (27), Galeola 
Lour. (7), Gastrodia Br. (5), Geodorum Jacks. (4), Goodyera 
Br. (15), Grammatophyllum BI. (1), Habenaria Willd. (106), 
Haemaria Ldl. (1), Hemipilia Ldi. (2), Henozia Hook. f. (1), 
Herminium L. (9), Herpysma Ldl. (1), Hetaeria BI. (6), 
Hylophila Ldl. (2), Ipsea Lid. (3), Fosephia Wight (1), Liparis 
Rich. (67), Listera Br. (4), Luisia Gaud. (13), Microsaccus 
BI. (2), Microstylis Nutt. (22), Monomeria Ldl. (1), Mystaci- 
dium Ldl. (1), Neottia L. (1), Nephelaphyllum BI. (4), Neuwiedia 
BI. (3), Oberonia Ldi. (47), Odontochilus BI. (10), Orchis L. (4), 
Ornithochilus Wall. (1), Otochilus Ldi. (3), Pachystoma BI. (1), 
Panisea Ldl. (2), Paphiopedium Pftz. (15), Phalaenopsis BI. (9), 
Phajus BI. (8), Pholidota Ldi. (11), Phreatia Ldi. (6), Physurus 
Rich. (2), Platyclinis Bth. (2), Plocoglottis BI. (2), Podochilus BI. 
(9), Pogonia Griff. (10), Polystachya Kook. (3), Renanthera Lour. 
(3), Rhynchostylis BI. (1), Saccolabium BI. (43), Sarcanthus Ldl. 
(13), Sarcochilus Br. (35), Satyrium Sw. (1), Spathoglottis BI. (8), 
Spiranthes Rich.(2), Stauropsis Rchb.(2), Sunipia Ldl.(1), Taenio- 
phyllum BI. (3), Tainia BI. (15), Thecostele Rchb. f. (3), Thelasis 
BI. (8), Tipularia Nutt. (1), Trias Ldl. (4), Trichogloitis BI. (2), 
Trichosma Ldi. (1), Tropidia Ldl.(5), Vanda Br.(15), Vanilla Sw. 
(5), Vrydagzynea BI. (3), Yoania Maxim. (1), Zewxine Ldl. (1 QE 
Les deux grandes presqu’îles de l’Asie méridionale, l’Archipel 
malais, les îles de Bornéo, de Célèbes, de la Nouvelle Guinée et 
des Philippines renferment un nombre d’'Orchidées d’autant plus 
considérable que, d’une part, la température de cette zone est 
remarquable par son uniformité et que, d’autre part, les saisons 
sèches alternant régulièrement, le maximum de chaleur corres- 
pond à l’humidité la plus intense, la plus bienfaisante, résul- 
tant de précipitations aqueuses prolongées et périodiques : « La 
pluie nous vient des Dieux, disent les chants religieux des 
Richeb (1); elle nous donne les plantes desquelles dépend le bien- 
PARMI See dv: 1 A eN VIP RER PSLUEE 2 ENTRER 


(x) MaTri BHARATA; Adi Pawa. Cantiques, 1720-1721. 


R— 


être des hommes. » Que de surprises nous réserve la connais- 


‘J 'ŒHOY 2005249 S1S44D — 


‘2Ec 


Bt 


2 — 
sance plus complète des flores du Tonkin, de l’Assam, du Cam- 
bodge, de l'empire de Siam, pays peu ou point explorés, à peine 
ouverts aux voyageurs et aux savants |! 

Au bord de la mer, le long des fleuves, sur les pentes hima- 
layennes s'affaissant vers la côte en gigantesques gradins et 
fécondées par l’eau qui découle des hautes montagnes, dans les 
plaines du bassin de l’Indus, dans les forêts de l’Assam où 
l’humidité est surabondante, dans ce paradis ensoleillé de l'Inde 
péninsulaire proprement dite, sans excès de sécheresse, ni de 
pluies, les Orchidées croissent, nombreuses et toujours admi- 
rables, dans des stations qui s’étagent le long des versants depuis 
700 jusqu’à 2,700 mètres d’altitude. Leurs stations présentent 
la plus grande diversité; les unes se rencontrent à côté des 
Palétuviers dans les marécages, sur les bords de la mer; d’autres, 
dans les terres basses humides et chaudes; d’autres à la limite 
de la végétation himalayenne. Citons parmi celles-ci le Cælogyne 
nitida croissant sur les ifs des forêts de Tongloo (Sikkim) à 
3,000 mètres de hauteur, les Pleione Hookeriana, P. humilis 
(fig. 227) et P. Wallichit qu'on rencontre dans le Sikkim à 2,500 
et à 3,000 mètres d'altitude, indifférents aux gelées nocturnes 
qui durent trois mois de l’année à cette hauteur, lançant leurs 
racines à travers la mousse qui tapisse les rocs, les troncs et les 
branches des arbres. 

M. Ridley, le savant directeur du jardin botanique de Sin- 
gapore, parlant des Orchidées de la presqu’île de Malacca, 
écrivait : « Figurez-vous que dans le mois de juillet, je me 
trouvais au pic de Kedah, marchant parmi des masses d’Orchi- 
dées (la plupart espèces nouvelles), jusqu’au cou! Il fallait les 
couper à la hache pour se frayer un chemin. Des Cælogyne, des 
Dendrobium, des Bulbophyllum, des Eria, des Spathogloths, des 
Dilochia, etc. couvraient littéralement la terre et les arbres. 
En de tels pays, on peut voir, on peut comprendre les 
Orchidées ! » 

Dans les monts Khasia, cette admirable partie du domaine 
himalayen, l'Orchidée est la famille végétale la plus nombreuse 
et la plus admirable. Dans l’Archipel malais, cent genres ont 
des représentants. Quoique cet Archipel soit encore loin d’être 
scientifiquement exploré dans son ensemble, il est dès aujour- 


PL. XXWII. 


COCHLIODA VULCANICA. 


DE FE QE 

d'hui certain que sa flore orchidéenne renferme, y compris les 
54 espèces de la Nouvelle Guinée, plus de 724 espèces endé- 
miques! La plupart sont de Java (426 L > douteuses) et des 
îles Philippines (124). Sur les 410 genres admis par Pftzer, 
20 genres sont endémiques dans l’Archipel malais, et 26, sans 
être propres à cet archipel, y comptent plus des deux tiers de 
leurs espèces. 

Le plus grand nombre de ces genres sont spéciaux à la flore 
de la région orientale du globe. 


XXII. PATRIE DES VANDA ET DE QUELQUES GENRES VOISINS. — 
Les Vanda et leurs proches alliés, les Renanthera et les Esmeralda 
sont essentiellement des Orchidées asiatiques. Les Vanda nous 
offrent toutefois à côté de vingt espèces originaires des Indes 
orientales et de l’Archipel Malais, une espèce originaire de 
l'Australie tropicale, le Vanda Hindsti. 

Trois espèces, le Vanda teres, le V. Roxburghi et le V. parviflora, 
ont une aire de dispersion quelque peu étendue. La première, si 
curieuse à raison de ses fleurs exquises et de ses tiges cylin- 
driques, se rencontre dans la partie septentrionale et orientale 
de l’Inde, l’Assam et la Birmanie supérieure. Elle croît dans des 
plaines et des vallées fort chaudes ; comme l'indique admirable- 
ment le diagnostic tiré de ses feuilles cylindriques, la plante vit 
exposée au plus vif soleil. Le Vanda Roxburghii se rencontre à 
Ceylan, dans les montagnes du Concan, aux environs de Bombay 
et dans diverses localités du Bengale. Orchidée épiphyte, elle 
se plaît surtout sur le Mangifera indica. Le Vanda parviflora a une 
aire encore plus vaste : son domaine comprend Ceylan, les 
montagnes de l'Himalaya depuis Kumaon jusqu'aux limites de 
l’Assam, la Birmanie, de Bombay à Travancore dans les mon- 
tagnes occidentales etc. Toutes les autres Vandées ont des 
habitats plus restreints. Les unes se rencontrent dans des loca- 
lités dont la température, élevée pendant le jour, est soumise 
à d'énormes variations pendant la nuit. Le Vanda alpina des 
monts Khasia, le V. Amesiana des montagnes méridionales du 
Laos (Shan States), vivent à des altitudes variant de 1,200 à 
1,800 mètres. Le Vanda caerulescens établit moins haut ses 
stations; elles ne dépassent guère 500 mètres d’altitude dans les 

23 


de 


monts Arracan à l’ouest de Prome; le V. Denisoniana s'élève 
jusqu’à 800 mètres dans les mêmes montagnes. 

Le V. cristata appartient à cette région moins élevée de 
l'Himalaya qui court de Kumaon à Bhotan; il en est de même 
du V. Bensonii, découvert par le général anglais dont il porte le 
nom; entre Prome et Tongu, dans la Birmanie, il croît côte à côte 
avec le Saccolabium giganteum et le Rhynchostalis retusa. On le 
rencontre dans des jungles brulées au soleil pendant la saison 
sèche : dans cette station le thermomètre dépasse à l’ombre 
souvent 45° C. Le V. Hookeriana, originaire de l'île de Bornéo 
vit, au bord des rivières Limbang et Tandaram et des lagunes 
de la côte, sur des troncs de Pandanées, exposés en plein soleil; 
dans ces habitats, la température atteint 35° C et les pluies sont 
fort abondantes (150 pouces par an). 

On comprend que de pareils Vanda ont besoin d'un traitement 
tout autre que celui exigé par le V. cœrulea (fig. 131) qui habite 
les environs de Lermaï de 1,000 à 1,300 mètres d'altitude, dans 
des vallées verdoyantes, échauffées par le soleil, mais entourées 
d’un air humide et frais. La température ne dépasse guère 26° C 
dans les forêts de Pins, de Gordonia et de Chênes où vit ce Vanda. 

Le V. insignis croît le long de la côte de Timor et dans la 
petite île voisine de Semao, dans des stations où la température 
moyenne atteint une très haute élévation, malgré le voisinage 
de la mer et leur altitude (300 mètres). Le VW. lamellata, origi- 
naire des îles Philippines, vit sur des rochers surplombant les 
flots, exposé aux embruns de la mer. Les V. /imbata, V. tricolor, 
et sa variété V. #r. suavis (1), originaires de Java, croissent sur 
les troncs du palmier à sucre (Arenga saccharifera); elles reçoi- 
vent dans leur patrie beaucoup d’eau et beaucoup de chaleur. 
Bien que l'altitude de certaines stations soit assez élevée (W. éri- 
color, 500 à goo mètres), il ne faut pas perdre de vue qu'à cette 


(1) Les variétés du Vanda tricolor sont innombrables. Toutes sont fort 
remarquables: les V. fricolor planilabris et suavis sont les plus connues et 
les plus répandues. Cette dernière doit sa grande popularité à ses feuilles 
rubanées, élégamment recourbées, à ses inflorescenses étalées, retombantes, 
à ses fleurs délicieusement parfumées. D’un spécimen à l’autre les fleurs 
diffèrent: de là, ces nombreuses variétés jardiniques : coccinea, flava, Hruby- 
ana, etc., etc. 


RENE À 


élévation, certaines îles et notamment Java sont une vaste serre 
chaude humide. 


Le Moulmein — on devait s'y attendre — nous apporte égale- 
ment un représentant de cette famille, le V. Parishii, une des 
belles espèces à grandes fleurs odorantes. 


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I (ff 


LU 


à 
Fig. 233. — Esmeralda Sanderiana Rens. f. 

Pendant longtemps les horticulteurs ont compris dans les 
Vanda, les Esmeralda de Reichenbach (Arachnanthe de Blume). 
Ce genre comprend six espèces dont trois, fort belles, sont 
cultivées dans les serres européennes : E. Sanderiana (fig. 214 et 
233), Cathcartit (fig. 21, A), Clarkei. L’Esmeralda Sanderiana, la 
plus belle Orchidée introduite dans ces dernières années, disait 


Reichenbach, est une Orchidée épiphyte, toujours verte, croissant 


en touffe dense, rameuse, portant des feuilles récurvées, cana- 
liculées, à pointe oblique; des aisselles sortent des racèmes 
multiflores (8-12-flores), portant des fleurs mesurant o",125 de 
diamètre, planes comme celles de l'Odontoglossum vexillarium. Le 
sépale supérieur et la moitié supérieure des pétales sont rouge 
bleuâtre ; les sépales inférieurs plus grands sont teintés de jaune 
verdâtre vif, avec des stries longitudinales et transversales rouge 
cramoisi, formant une sorte de damier serré; le labelle minuscule 
cramoisi brun sert de repoussoir aux autres couleurs. Cette belle 
Orchidée est originaire des Philippines. Les deux autres espèces 


cultivées croissent dans les vallées chaudes, humides et pro- 


fondes de l'Himalaya oriental. Les unes (E. Cathcartii) se plai- 
sent surtout dans le voisinage des chutes d'eau, vivent dans 
une buée d'étuve chaude et tiède, à l’ombre du feuillage des 
autres plantes, et sont, de mai à octobre, soumises aux pluies 
intenses, journalières, propres à cette partie du globe; les autres 
(E. Clarkei) croissent à une altitude plus élevée, dans cette admi- 
rable partie himalayenne du district de Sikkim, à une altitude 
de 2,000 mètres environ, exposées au soleil et aux vents pendant 
la saison sèche, aux pluies froides et aux brouillards humides 
pendant la saison pluvieuse, subissant même parfois la neige en 
janvier. La température à pareille altitude ne dépasse pas 24° C, 
mais le thermomètre descend pendant l’hiver à 7° C, parfois 
même à + 1° C. 

Le magnifique Renanthera Lowii (fig. 164) vient de stations 
plus chaudes : il croît dans l’île de Bornéo, aux environs de 
Sarawak. On le trouve en colonies assez nombreuses, croissant 
horizontalement sur la tige principale d’un grand arbre; de 
chaque plante pendent deux, trois ou quatre racèmes fleuris, 
de dix à douze pieds de long. On rencontre toujours cette 
Orchidée dans le voisinage des cours d’eau ; elle s'établit généra- 
lement sur les branches les plus élevées des plus grands arbres; 
dans le voisinage de ce Renanthera, on récolte fréquemment les 
Paphiopedium Low. 

Deux autres espèces originaires des îles de l’Archipel indien 
sont souvent cultivées : le Renanthera coccinea (fig. 135) qui 
habite les petits îles Mosco, en face de Tavoy et la Cochinchine; 
le R. matutina, qui croît sur les arbres, à l’enfourchure des bran- 


MAT. 


ches, dans les larges forêts situées au pied du Mont Salak dans 
l'île de Java (Gi). 


XXIII. HABITAT DES CyMBipiuM. — L’extrème Orient est la 
patrie du beau genre Cymbidium. On rencontre souvent dans les 
serres les C. Devonianum, C. eburneum (fig. 234), C. giganteum 
(fig. 41, A) et C. Lowianum (fig. 161), espèces montagnardes 
du Népaul et des Khasia. Orchidées épiphytes et demi-terrestres, 


Fig. 234. — Cymbidium eburneum LoL. 


aux pseudo-bulbes généralement très petits et peu apparents 
comme dans le C. cburneum, ces plantes habitent l’Inde tropicale, 
la Malaisie et le sud de la Chine. Elles croissent à une altitude 
de 1,700 à 2,000 mètres dans les monts himalayens du Népaul 


(x) À ce sujet qu’il nous soit permis de donner en exemple aux collecteurs 
modernes la conscience apportée dans ses descriptions par le grand botaniste 
hollandais Blume. Il décrivit avec tant d’exactitude la station du R. coccinea 
que plus de vingt ans après, Thomas Lobb n'eut pas de peine à la retrouver. 


et de Sikkim. Quelques espèces ont des centres isolés au Japon 
et en Australie. Elles se plaisent sur des troncs d’arbres ver- 
moulus ou aux enfourchements des branches, dans l’humus formé 
par la décomposition des végétaux. Le Cymbidium ensifolium, de 
la Chine, est une des plus anciennes Orchidées cultivées en 
Europe : son introduction est antérieure à 1780. 


XXIV. PATRIE DES RHyNcHosTyLis. — Blume, et après lui 
Reichenbach, décrivirent un genre nouveau Rhynchostylis dans 
lequel ils firent rentrer le Wanda violacea de Lindley. Cette 
Orchidée et toutes celles qui en ont été rapprochées sont origi- 
naires de l’Inde et de l’Archipel malais. Plantes très floribondes 
aux grappes denses et cylindriques, les Rhynchostylis se rencon- 
trent sur des arbres isolés dans de vastes régions au Siam 
(R. cælestis Rchb. f. fig. 235), dans les jungles de l'Inde méridio- 
nale (R. retusa B1.) où, comme le raconte un humoriste anglais, 
sous un couvert épais de Solanum ferox et d’Acacia épineux, 
d'innombrables grenouilles chantent les bienfaits de la malaria, 
de la fièvre et du choléra, aux cobras, aux serpents et aux 
moustiques. Le R. retusa asiatique et le Cattleya labiala américain 
sont de toutes les Orchidées épiphytes celles qui ont l’aire de 
dispersion la plus étendue. 


XXV. ORCHIDÉES DE LA NOUVELLE GUINÉE. — La Nouvelle- 
Guinée, l’une des plus grandes îles du globe, est encore presque 
inexplorée. Sa flore rappelle par certains côtés celles des îles 
Malaises ou de l'Australie. Elle nous présente un genre endé- 
mique Latourea, dont le type et l'unique espèce L. spectabilis BI. 
fut réuni à tort, croyons-nous, par Miquel aux Dendrobium. 
Quant aux autres genres Appendicula, Bulbophyllum, Cheirostylis, 
Cleisostoma, Cleistes, Cypripedium, Dendrobium, Doritis, Era, 
Hetaeria, Microstylis, Oberonia, Phreatia, Saccolabium, Vrydag- 
zynea, les espèces papouasiennes sont presque toutes propres à 
cette grande île. A côté de celles-ci, elle en possède d’autres à 
aires fort étendues, les Corymbis, les Spathoglottis, les Pogonia, 
les Coelogyne, qui irradient des continents voisins. 


XXVI. ORCHIDÉES NORD-AUSTRALIENNES. — Le nord de l’Aus- 
tralie est, il est vrai, situé dans les limites de la région tropicale; 


RARE 
mais les précipitations aqueuses y sont fort peu fréquentes et 
diminuent beaucoup d'intensité à mesure qu’on avance vers le 
sud. Les Orchidées y deviennent plus rares. Ce n'est que sur les 
collines orientales du Queensland, où les pluies sont plus abon- 


dantes, que nous retrouvons les Orchidées épiphytes, dont un 
Vanda (V. Hindsii), et la plupart des 250 Orchidées australiennes 
décrites, presque toutes endémiques à l’Australie. 


XXVII. DOMAINE DES DENDROBIUM. — Parmi les Orchidées 


— 360 — 


épiphytes de l’ancien monde, les Dendrobium tiennent le premier 
rang par leur nombre et par leur beauté. Ils occupent un 
territoire immense qui comprend l’Asie méridionale orientale, 
l'Australie, l’Archipel malais et les îles de l’ouest du Pacifique, 
c’est à dire toute la région s'étendant entre le 8o° et le 160° 
méridien de longitude est ; de ce domaine déjà si grand, quelques 
espèces irradient vers le sud de l'Inde, le Japon, les îles de la 
Société, la Nouvelle Zélande. Aucune ne vit en Afrique ni en 
Europe. Quoique se rencontrant dans les stations les plus 
diverses, il est un fait bien remarquable et que l’auteur anonyme 
de l'excellent Manual of orchidaceous Plants a le premier mis en 
lumière : presque tous les Dendrobium à fleurs brillantes sont 
confinés dans une région relativement étroite, allant en zigzag 
à travers les chaînes les plus basses de l’Himalaya, du Népaul 
vers le 8o° méridien Est. Dans l’Assam, le Moulmein et Java, 
les espèces sont très nombreuses et massées en grand nombre 
sur un étroit espace. Le climat de ces régions est caractérisé 
par une température moyenne élevée, accompagnée d’une humi- 
dité abondante provenant de la condensation en brouillards et de 
la précipitation en pluie des vapeurs qui s'élèvent du golfe de 
Bengale. Dans les contrées où les Dendrobium abondent comme 
les districts de Sylhet et de Cachar, la température moyenne ne 
descend jamais au dessous de 17°5 C. Les plaines chaudes du 
Moulmein et de la basse Birmanie, ont une moyenne de 2;° C, 
mais celle-ci s'élève pendant la saison sèche à 49° C. Dans 
de pareilles situations, les pseudo-bulbes sont soumis à une 
telle évaporation qu’ils perdent souvent la moitié de leur volume, 
de décembre à mars; il est vrai que pendant la saison des 
pluies, ils sont noyés sous l’eau. 

La liste des belles espèces de Dendrobium, cultivées dans 
les serres, est fort longue. Presque toutes se distinguent par 
le coloris merveilleux de leurs fleurs. Un volume ne suffrait 
pas pour décrire toutes celles qui sont recherchées soit pour 
l'éclat, soit pour la douceur des teintes de leurs périanthes 
satinés, variant à l'infini (D. nobile (fig. 132); D. nobile var. 
albiflorum, Collianum, Cooksonianum (fig. 236), intermedium, 
nobilius, Schroederianum, Schneiderianum, Tollianum, Wallichia- 
num, etc.). 


Presque tous les Dendrobium cultivés appartiennent à la 
section des Eudendrobium ou à celle des Stachyobium. La 
première est reconnaissable par ses tiges non branchues et 
feuillues soit sur toute la longueur, soit seulement au sommet 
(fig. 64). La seconde se distingue par ses tiges plus allongées et 
ses racèmes terminaux, érigés et pluriflores. 

La section des Eudendrobium est si nombreuse que les horti- 
culteurs et les botanistes l’ont subdivisée en sous-sections. La 


Fig. 236. — Dendrobium nobile Loc. var. Cooksonianum Rcus. f. 


première de celles-ci comprend les espèces ayant des racèmes 
denses, latéraux, presque terminaux, portant de nombreuses 
fleurs, petites, munies d'ordinaire d’un éperon allongé. Les Den- 
drobium secundum, D.aemulatum, D. cumulatum, D. secundum, etc. 
font partie de cette section appelée Pycnostachyée. Ces Orchidées 
toutes fort belles habitent les vallées chaudes du Moulmein, de 
Sumatra et de Bornéo. 


— 362 — 


La beauté de leurs fleurs grandes, ornementales, presque tou- 
jours blanches, rarement jaunes pâles a valu au second groupe 
le nom de Formosae. Les fleurs viennent en groupes serrés au 
sommet des tiges(1)}. Dans ce groupe rentrent les D. carmi- 
ferum, cruentum, Draconis, formosum (fig. 237), infundibulum, 
longicornu, Lowii, scabrilingue, etc. On les rencontre surtout en 
Birmanie croissant à une altitude de 800 à 1,800 mètres (D. Lowri) 
sur des arbres à feuilles caduques ou sur des rochers moussus, 
soit dans des stations situées près de la mer, soit dans des loca- 
lités où il pleut onze mois par an. Certaines espèces résistent 
à de brusques variations de température. Le D. infundibulum 
croît dans des stations où le thermomètre accuse, pendant des 
mois, un écart quotidien de 19° C entre les températures relevées 
au lever du soleil et à midi. Le D. Draconis a l’aire de dispersion 
la plus considérable : on a récolté cette plante dans les Indes, à 
Siam et dans la Cochinchine. 

Le troisième groupe, celui des Calostachyées ou Dendrocoryne 
de Lindley, émet des racèmes latéraux, lâches, plus ou moins 
allongés, garnis toujours de fort belles fleurs. Plusieurs espèces 
comptent parmi les plus beaux Dendrobium cultivés : D, Bryme- 
rianum (fig. 159), D. chrysotoxum, D. densiflorum (fig. 64) et sa 
variété D. thyrsiflorum, D. Farmeri (fig. 238), D. fimbriatum 
(fig. 160), D. moschatum, etc. Les botanistes ont récolté les 
Dendrobium de ce groupe, surtout aux Indes, dans les vallées 
chaudes du Sikkim, de 300 à 1,800 mètres d’altitude, à Ceylan, à 
Java, dans les îles Philippines. Au Nord, ils ne dépassent pas la 
Chine méridionale où croît le D. aggregatum. Certaines espèces 
présentent d’élégantes démonstrations de l’influence du climat 
sur le développement de l'Orchidée. Le D. Chrysotoxum habite la 
Birmanie inférieure; il s’élève dans les monts Arracan et dans 
les montagnes du Moulmein jusqu’à 1,000 mètres d'altitude; 
mais tandis que les espèces croissant dans les plaines ont des 
tiges allongées, celles des plantes récoltées dans des stations 
plus élevées sont comprimées et globuleuses. 

Dans le groupe le plus populaire, celui des Fasciculées, les 


(1) Les horticulteurs désignent souvent les espèces de cette section sous le 
nom de #igro-hirsuta, allusion aux poils noirs qui apparaissent sur les jeunes 
pousses, 


= — 
fleurs sont admirables et apparaissent en faisceaux latéraux 
(2 à 3) sur des tiges presque toujours sans feuilles. On rencontre 
ces beaux Dendrobium dans les régions chaudes et basses de 
la Birmanie et du Moulmein : c’est leur territoire d'élection. 
Ils y croissent en plein soleil, sur des arbres : D. albo-sangui- 
neum, D. Aphrodite, D. Bensomiae, D. Boxalli, D. cappilipes, 
D. chrysocrepis, D. crystallinum, D. gratiosissimum, D. lassio- 
glossum, D. lituiflorum et ses variétés, D. mesochlorum, D. rhodop- 
terygium, D. senile etc. Quelques espèces vivent dans des stations 
plus fraîches, tempérées l'été, relativement froides en hiver; c’est 


Fig. 237. — Dendrobium formosum Roxsc. 


le cas du D. amoenum des monts hymalayens. D’autres espèces 
se rencontrent au Siam (D. crassinode, D. Findleyanum), dans 
l’Assam (D. crepidatum, D. Falconeri), dans l’Archipel malais 
(D. leucophatum, D. Huitonii de Timor), à Ceylan (D. sangut- 
nolentum), aux îles Philippines (D. Ruckeri, D. superbum et ses 
variétés, D. taurinum, etc.). En général les stations sont peu 
nombreuses et fort disséminées. Berkeley n’a rencontré aux 
Indes qu’une colonie du joli D. aqueum dans une plantation 
abandonnée de Caféiers, située dans la chaîne des Nilgherris. 
Quelques espèces ont un domaine très étendu, mais dans ce 


co — 

cas, nous nous trouvons en présence d'espèces à fleurs poly- 
morphes, comme le D. chrysanthum si fréquent dans les parties 
basses de l'Himalaya et de la Birmanie; comme le charmant 
D. aureum dont le domaine s’étend dans l’Assam, les Monts 
Khasia, le Népaul, Madras, Ceylan, Moulmein et la Birmanie 
et gagne les îles Philippines; comme le D. cretaceum qui occupe 
dans la péninsule indienne un immense territoire d’Assam à 
Tenasserim et lance des irradiations dans tout l’Archipel indien; 
comme le D. Devonianum, qui se rencontre dans le nord de 
l'Inde, dans l’Assam, dans la Birmanie, dans l’empire de Siam 
et dans la Chine méridionale. L’aire de dispersion de l’espèce la 
plus connue, le D. nobile (fig. 132),est mal définie. On le rencontre 
dans l’Inde et en Chine : c'est du moins de ce pays qu'il fut 
introduit ; il varie à l'infini, et l’une de ses variétés, le D. nobile 
Cooksonianum (fig. 236) est l’une des plus remarquables du 
groupe des rares Orchidées trilabellées. C’est encore aux envi- 
rons du golfe du Bengale que nous rencontrons les D. Pue- 
yardi et primulinum croissant sur des arbres dans les vallées 
chaudes du Sikkim et du Népaul. Trois espèces remontent 
vers le nord : le D. japonicum qui habite dans l’Archipel 
japonais, les îles Oki et les flots voisins du détroit de Corée, le 
D. Linawianum et le D. Loddigesii qui appartiennent à la flore 
chinoise. 

Quelques espèces du groupe fasciculé émettent leurs fleurs 
avant la maturation du pseudo-bulbe, alors que celui-ci garde 
encore ses feuilles. C’est le cas d’une espèce alpestre, le 
D. ochreatum qui croît dans les monts Khasia à 1,300 mètres. 

Si la sous-section des Stachyobium possède des représentants 
dans la flore chinoise (D. aduncum des montagnes Lo-fan-Shan), 
dans celle de l'Inde méridionale (D. chlorops), de l’Assam 
(D. Feuhinsii), du Moulmein (D. ciliatum), du Népaul (D. clava- 
tum), de Java (le très rare D. cymbidioides et le D. mutabile), de la 
Birmanie où fleurissent le ravissant D. Dalhousieanum (fig.193) et 
le joli D. Fytchianum, si on rencontre aux îles Philippines le 
D. Dearei à l’admirable fleur blanche, c’est surtout en Australie 
que cette sous-section nous offre ses plus nombreux représen- 
tants : D. aemulum, bigibbum, canaliculatum, Kingianum, 
Macfarlanei, Moorei, Phalaenopsis (la plus belle du groupe), 


Ro — 
D. speciosum, superbiens, tetragonum, etc. Ces espèces austra- 
liennes viennent dans des localités situées près de la mer. 

Tous les Dendrobium se rencontrent dans les jungles et à 
la lisière des bois, sur des arbres de haute futaie, s'élevant en 
général au-dessus de sous-bois denses. Ils y sont toujours 
exposés, dit Hooker, aux influences bienfaisantes d’une atmos- 
phère sans cesse renouvelée. Ces habitats nous indiquent combien 
est grand le besoin qu'ont ces Orchidées d’air et de lumière. 


XXVIII. PATRIE DES PHALAENOPsIS. — La zone tropicale 
asiatique seule est la patrie des Phalaenopsis. Ils habitent à 
l’entrée des bois, au bord des clairières, là où les cours d’eau 
sortent des profondeurs ombreuses et reflètent dans leurs eaux 
surprises les rayons ardents du soleil. Ils vivent aussi sur les 
rochers enveloppés de brouillards ou baignés par les embruns 
de la mer (1). S'attachant à l'arbre ou au roc par leurs racines 
bizarres, charnues, haptotropes, ils émettent des feuilles souvent 
fort belles et des racèmes de fleurs brillantes, éphémères sous 
les tropiques, plus durables dans nos serres. En général, les 
stations de Phalaenopsis ne dépassent pas 400 mètres d’alti- 
tude : les plantes y sont protégées contre le soleil par un écran 
de feuillage assez touffu pour les préserver d’un rayonnement 
trop intense, assez large pour permettre à la lumière d’éclairer 
fortement les feuilles. On ne les rencontre pas à l'intérieur des 
forêts où la verdure des cîmes forme un dôme impénétrable 
aux rayons du soleil. 

Les plus beaux, tous les Euphalaenopsis : P. amabilis (2), 
Aphrodite, Sanderiana, Schilleriana (fig. 21 et 54), Stuartiana 
(fig. 39), croissent dans les îles Philippines : ils occupent une 
aire s'étendant du 15% parallèle nord au 8° parallèle sud et 
du 95° au 125°%° méridien de longitude est. Une seule espèce 
est disjointe : le P. Mannii apparaît dans l’Assam. Les autres 
Phalaenopsis vivent en Cochinchine (1), dans le Moulmein (2), 


(1) Les Phalaenopsis sont surtout abondants sur les arbres qui ombra- 
gent les rivages des petites îles de l’Archipel malais. 

(2) L'espèce type, le Phalaenopsis amabilis, la « Reine des Orchidées » 
(fig. 137), a une aire plus vaste; elle se rencontre dans tout l’Archipel malais. 


"366 — 


dans le delta de l'Irawaddy (1), mais surtout dans toute la Ma- 
laisie jusqu’à Java. Leurs habitats diffèrent à l'infini : celui-ci 
(P. Lowti) croît en plein soleil sur les rochers, baigné par la 
vapeur d’eau du delta de Tenasserim; cet autre (P. Cornu-cervi) 
est placé dans la fourche des branches élevées des arbres de 
Bornéo, protégé par le feuillage de la cime contre les ardeurs du 
soleil, exposé pendant six mois à des pluies torrentielles et bercé 
toute l’année par des brises fraîches et salines. Tel autre (P. Es- 
meralda) s'établit dans les anfractuosités et les crevasses des 
rochers calcaires, où se rencontrent quelques détritus végétaux 
si rapidement décomposés par l’action du soleil et des pluies 
tropicales (1). Certaines espèces (P. fetraspis) recherchent l’ombre 
douce de quelques arbres peu touffus, comme les P. Low, 
Parishii et villosum qui vivent sur les troncs d’arbres parmi les 
épiphytes morts, les mousses touffues et les lichens desséchés. 


XXIX. HABITAT DES ANOECTOCHILUS. — Les Anoectochilus, 
comme quelques espèces de Cystorchis, de Microstylis, peut-être 
de Goodyera, en ne s’enracinant pas dans le sol même, se 
maintiennent toujours près de terre; ce sont de fausses épi- 
phytes; leurs racines rampent au milieu des feuilles mortes, de 
la mousse, de l’humus et des débris végétaux qui tapissent le sol : 
Anoectochilus Reinwardti (fig. 212). On les arrache aisément, rien 
ne les attachant à la terre. Leurs racines recherchent l’ombre 
et l’air. D'après M. B. Freeman, un collecteur plein de mérite, 
les Anoectochiles vivent à une altitude de 1,000 à 1,200 mètres, 
le plus souvent dans les ravins, près des ruisseaux, dans les 
montagnes. La température tombe beaucoup au dessous de 
zéro en hiver, mais ces plantes ne sont jamais gelées, étant 
abritées sous les arbres. Le maximum de température n’excède 
jamais 21° C et encore ne dure-t-il que pendant quelques heures. 
Ces admirables Orchidées croissent vigoureusement par une 
température de 18° C : elles pourrissent très rapidement si 
des matières végétales en décomposition ou de la moississure 


(1) Le P. Parishii a été découvert croissant sur des troncs d’arbres dans les 
racines et les feuilles décomposées d’une fougère, le Drymaria quercifolia. 


vient à s’accumuler autour de leur tige; elles ne résistent pas 


à un moment de sécheresse, mais elles ne sauraient vivre non 
plus dans l’humidité stagnante. 


XXX. ORCHIDÉES DE L’AFRIQUE TROPICALE. — Pendant 
longtemps, l'Afrique parut fort pauvre en Orchidées. La Vanille 
croissait, disait-on, dans les forêts de la côte occidentale. Les 
botanistes renseignaient la présence du Pierogossaspis et du 
Deroemeria en Abyssinie, et de quelques Orchidées dans les 
autres parties du continent Africain. Il a fallu le beau travail 
de MM. Durand et Schink sur la flore de cette partie du monde(1) 
pour nous révéler toute l’étendue de ses richesses orchidéennes. 
Contrairement à une opinion trop longtemps accréditée, il est 
reconnu aujourd’hui que le continent africain possède plus de 
mille espèces décrites, c'est à dire presque autant d'Orchidées 
que la partie du monde regardée comme le domaine d’élection 
de la famille, les Indes anglaises qui comptent 1,270 espèces. 

Les genres africains tels que les Hetaeria, les Mystacidium, 
les Barlaea, les Pogonia, les Cyrtopodium, les Platylepris, les 
Pachystoma, les Cherrostylis, 
les Holothrix, les Brachycoritis, 
les Zeuxine, les Disperis, les 
Ihsea, les Polystachis, les Cynor- 
chis, les Corymbis, offrent, il 
est vrai, plus d'intérêt au 
botaniste qu'à l’amateur, mais 


d’autres, comme l’Ansellia 
africana congoensis (fig. 239) Fig. 238. — Dendrobium Farmeri Paar. 
aux jolies fleurs si curieusement ponctuées, ont pris place parmi 
les plantes recherchées des orchidophiles, au même titre que 
les belles Orchidées originaires des îles Mascareignes ou du Cap. 

Cette contrée n’est plus aujourd’hui le désert des anciens 
géographes, immense, aride, désolé. A l'exception des deux 
zones de roches, de graviers, d’argiles rouges et de sables 
presque complètement stérilisés, — désert lybique et Sahara au 


(x) Conspectus Florae À fricae par TH. DURAND et SCHINK. 1804. 


Nord, désert de Kalahari, plaines du Namaqualand et du pays 
des Boshmen au Sud, — les autres territoires du continent 
africain, soumis à des pluies périodiques intenses, offrent aux 
Orchidées l'eau, la chaleur et la lumière nécessaires à leur déve- 
loppement. Sans nul doute, nous verrons s’allonger la liste des 
Orchidées de cette partie de l'Afrique. Mieux que des bras de 
mer, les déserts arides séparent la flore du bassin méditer- 
ranéen et du Cap, de celle de l'Afrique centrale. L'eau y fait 
défaut, l’eau sans laquelle — disent les antiques inscriptions 
du Musée de Boulaqg — « les Dieux tombent sur la face et les 
hommes périssent ». Nous ignorons les merveilles que réserve 
à nos serres la flore orchidéenne du Congo. En ce moment, 
le caoutchouc, l’ivoire, l'huile et les noix de palme intéressent 
encore trop les explorateurs, mais tout fait prévoir que, pour le 
Bas Congo tout au moins, les botanistes trouveront un jour 
de curieuses Orchidées dans les forêts serrées et touffues qui 
bordent le littoral depuis Sierra Leone jusqu'au 4° ou 5° degré 
au sud de l’Equateur et qui s'étendent dans l'intérieur des terres 
jusqu’au Victoria Nyanza et au lac Tanganika. 

Les torrides ardeurs du soleil et la fermentation d’une boue 
fangeuse font naître des végétations capables de lutter en abon- 
dance, en variété et en monstrueuses dimensions, avec les forêts 
préhistoriques de la période houillère. « L'Afrique tropicale, 
affirme M. Johnston, dément la théorie des naturalistes disposés 
à refuser aux zones équatoriales des fleurs comparables à celles 
des régions tempérées. Une Orchidée, le Lissochilus giganteus, a 
une hauteur de 1",80 et se couvre d’une profusion de fleurs rouge 
mauve, jaune d’or au centre, si belles qu’il n’existe guère de 
fleurs plus remarquables par la richesse du coloris et par la déli- 
catesse des contours. Ces Orchidées avec leurs feuilles vert-clair 
ensiformes et leurs robustes hampes florales incurvées, croissent 
par groupes de quarante à cinquante individus; elles se mirent 
dans les mares d'eau stagnantes peu profondes où baignent leurs 
pseudo-bulbes et teignent de leur délicate nuance la lisière des 
majestueuses forêts au feuillage vert-pourpre (1). » 


(1) Le fleuve Congo, depuis son embouchure jusqu'à Balobo. Sampson, 
Low et Co, 1884, p. 648. 


PR 


PL. XXIV. 


—_ 0 

La végétation de la côte occidentale d'Afrique (côte de 
Kameroun, côte des Esclaves, etc.), celle des terres du Bas Niger 
fortement chauffées par le soleil, abondamment arrosées, se 
compose de Palétuviers sur les vases marines, de Pandanées 
et de Raphia sur les terres basses constamment émergées. Puis 
viennent, quand le sol se relève, les forêts dont les arbres sont 
unis en une seule masse par l’enlacement des lianes. Ces pays 
n'ont guère été explorés(1). Ici comme dans les plateaux de l’in- 
térieur entre le Kouilou et le Congo, dans les prairies et les 
brousses, nous ne connaissons guère d'Orchidées ; jusqu'aujour- 
d’hui elles ne semblent avoir eu d’autres admirateurs que ces 
primates auxquels l’homme, primate civilisé, a imposé le nom de 
gorilles. Nous n'avons à signaler comme Orchidées provenant de 
l'Afrique tropicale-occidentale que les Liparis guineensis Ldl. 
qu’on retrouve à Sierra Leone, le Liparis Guingangae Rchb. f., 
l’'Eulophia lurida Lindi. et le Corymbis corymbosa Thou. qu’on 
rencontre à l’île San Thomas, les 
Holotrix squamulosa Lindi. et villosa 
Lindl. et le Disperis cucullata Sw. 
qui croissent dans l'Afrique austro- 
occidentale. 

Le territoire de Kameroun étudié 
au point de vue botanique par J. 
Braun(2), en 1889, nous a révélé la 
présence dans cette partie de l'Afri- 
que tropicale, d'un Liparis, de sept 
mn RU + do a Fig. 230. — Ansellia africana 
d'un Eulophia, de quatre Polysta- Loc. var. congoensis Horr. 
chya, de nombreux Angraecum, et de diverses variétés de Vanilla. 

Séparée du continent africain par un détroit large d'une 
trentaine de kilomètres, l'île Fernando-Po offre, dans sa flore, 
un degré de parenté plus étroite avec les îles de l'Océan indien 
qu'avec le Cap et les îles de l'Atlantique. Citons parmi les 
Orchidées intéressantes de cette région, l’Ansellia (fig. 43) qui 


(1) Mann explora la montagne des Dieux (Mongo-ma-Loba). 
(2) Botanischer Bericht über die Flora von Kamerun par J. BRAUN. Mit- 
theilungen aus den deutschen Schutzgebieten. II, 1889. 


24 


croît sur le Palmier à l’huile (Elaeis guineensis) et le Megaclinium 
falcatum Ldi. au labelle si curieux par sa mobilité. 


XXXI. ORCHIDÉES TROPICALES AMÉRICAINES. — L’Orchidée 
reprend dans les contrées des régions tropicales et subtropicales 
du Nouveau Monde, la place qu’elle avait dans la flore indo-orien- 
tale de l’ancien monde. Le voisinage de la mer, l’altitude élevée 
de la station, atténuent les effets de la latitude et amènent la pré- 
sence d’une végétation dont les traits semblent empruntés en partie 
aux vallées sous-himalayennes. Les Fougères en arbre remontent 
lentement le long des pentes des montagnes. En quittant les 
fonds bas et chauds des vallées, on voit apparaître successive- 
ment les formes caractéristiques des flores des climats tempérés; 
tandis que les Chênes, les Pins et les Sapins garnissent les crêtes 
montagneuses des formes variées de la végétation alpine. 

A l'exception des Pampas de la République Argentine, des 
Campos du Brésil, des Savanes du Vénézuéla, des contrées 
arides situées le long du Pacifique, l’Orchidée peut vivre dans 
toutes les parties de l'Amérique tropicale et développer en 
abondance ses splendides floraisons. 

Le Mexique, les Antilles, le Guatémala, le Honduras, le Nica- 
ragua, le Costa-Rica, la Colombie, le Vénézuéla, les Guyanes, la 
république de l’Équateur, le Brésil, le Pérou et la Bolivie, tel est 
en Amérique le domaine orchidéen par excellence. Devons-nous 
rappeler que déjà en 1844, Ach. Richard avait étudié 300 espèces 
mexicaines ; que le consul Liebmann, un des orchidologues les 
plus perspicaces de ces dernières années, avait récolté plus de 
deux cents Orchidées d'espèces différentes dans les régions élevées 
du Mexique; que telle localité, comme Bogota ou Ocanña, est si 
riche en espèces qu’un jour, étant de fort méchante humeur, 
lassé de voir sans cesse arriver de nouvelles espèces colom- 
biennes, Reichenbach s'écria: « J’en ai assez de cette Ocanerie; 
il est inconcevable que tout le monde coure à cette malheureuse 
Ocaña où l’on ne trouve que des Orchidées à grandes fleurs, alors 
qu’il y a dans l’Amérique du Sud tant d’autres contrées, riches 
en Orchidées et qui n’ont jamais été visitées »!!! N'en déplaise 
à la mémoire du botaniste hambourgeois, les amateurs sont 
toujours plus tentés par la beauté des grandes fleurs que par les 


310 
mystères des petites fleurs insignifiantes, si chères aux botanistes. 
Alexandre de Humboldt fit, le premier, cette remarque fort 
judicieuse : « Les Orchidées des Andes du Mexique, de la Nouvelle- 
Grenade, de Quito et du Pérou l’emportent sur leurs congénères 
par la variété de leurs formes, le coloris de leurs fleurs, la finesse 
et la douceur de leur parfum. La vie d’un peintre ne suffrait 


pas, dit-il (1), pour reproduire, même en se bornant à un étroit 


espace de terre, les magnifiques Orchidées qui ornent les vallées 
profondes des Andes du Pérou. » Cette observation se trouve 
confirmée quotidiennement par les récoltes faites dans les con- 
trées chaudes et humides de l’Asie et de l’Afrique : elles sont 


rares, les Orchidées nouvelles pouvant supporter la comparaison 


avec celles de la région américaine qu’enserrent l’Océan Pacifique 
d'une part, le Golfe du Mexique, la mer des Antilles et l'Océan 
Atlantique d'autre part, du tropique du Cancer au nord, au tro- 
pique du Capricorne au sud. 

En général, toutes les espèces sont cantonnées dans des 
stations définies et limitées. C’est l'application de cette loi phy- 
siologique : de deux organes de même nature, mais de surfaces 
inégales, celui dont la superficie est la plus grande, est plus 
impressionnable aux agents physiques. Plus grandes sont les 
fleurs, plus étroit sera donc le cantonnement de l’espèce : aussi le 
nombre des espèces est-il, en ces pays, plus considérable que 
partout ailleurs. 

Dans les Antilles, les Orchidées occupent le second rang 
pour le nombre; elles forment les sept centièmes de la végéta- 
tion totale; Richard Schomburgk a de même reconnu que les 
Orchidées viennent au troisième rang dans la Guyane anglaise, 
formant à elles seules six pour cent du nombre total des espèces. 

Dans cette région où les Orchidées abondent, les genres qui 
nous intéressent le plus au point de vue horticole sont les 
Epidendrum, les Odontoglossum, les Oncidium, les Zygopetalum, 
les Sobralia, les Cattleya et les Masdevallia. Nous les étudierons 
plus loin d'une manière toute spéciale, faisant toutefois observer 
maintenant que, dans les stations où ces genres sont repré- 


(x) Tableaux de la nature, L. IV. Ch. I. 


= 37 — 
sentés, d’autres Orchidées se rencontrent à côté d’elles, berçant 
mollement leurs racèmes multiflores et répandant leurs par- 
fums pénétrants à l’heure où, comme dit le poète des tropiques, 
Leconte de Lisle : 
Les bruits cessent, l’air brûle et la lumière intense 
Endort le ciel et la forêt. 

Sans parler d'Ocaña dont la prodigieuse fécondité excitait la 
verve railleuse de Reichenbach, il nous suffit de rappeler les 
merveilles orchidéennes recueillies dans la région sud-mexicaine 
d'Oaxaca, par Leibold, Liebmann, Galeotti, Jurgensen, Ehren- 
berg (1), etc., etc. 

Le Brésil vient en tête de la Flore orchidéenne américaine; 
il nous présente 1,059 espèces. La Colombie vient après lui : 
614 espèces, puis le Pérou, 526, et le Mexique, 504. Au Brésil, 
puis au Panama, nous rencontrons le plus grand nombre de 
genres endémiques. La flore mexicaine présente des affinités 
particulières avec celles des Indes occidentales et de l'Amérique 
équatoriale. Quatre espèces d’Orchidées irradiant des États-Unis, 
s’y rencontrent avec les nombreuses espèces rappelant les flores 
des Antilles et du Brésil. 

Dans ces contrées baignées d’un côté par la mer des Antilles 
et l'Océan Atlantique, de l’autre par l'Océan Pacifique, traversées 
par des fleuves, vastes comme des mers intérieures, la Magda- 
lena, l'Orénoque et l’Amazone dont les eaux communiquent et 
se confondent même pendant l’époque des grandes crues, dans 
ces contrées où les végétaux trouvant la terre trop étroite, che- 
vauchent les uns sur les autres dans la plus étrange confusion, 


(1) Parmi les Orchidées, on trouve à l’état spontané : quelques Shiranthes et 
Maxillaria abondants parmi les forêts de chènes; plus rarement Laelia anceps, 
Epidendrum cochleatum, E. nemovale, E. vitellinusm, E. ciliare, E. odovatissi- 
mum, Arbophyllum spicatum, Cyrtopodium punctatum, Mormodes aromatica, 
Trichopilia tortilis, Oncidium stramineum, O. ornithorhynchum, O. incuruum, 
O. reflexum, O. Cavendishianum, O. maculatum, Lycaste aromatica, L. Deppei, 
Caœlia Bauerana, Odontoglossum bictoniense, O. nebulosum, O. maculatum, 
O. cordatum, Cattleya citrina, Chysis bractescens, Schomburgkia tibicinis, Sobra- 
lia macrantha (fig. 157), divers Zsochilus, Cypribedium Irapeanum, Chysis 
aurea, Acineta Barkeri, Laelia albida, etc.; à l’état cultivé : Epidendrum 
Brassavolae, E. eburneum, E. oncidioides, Catasetum tridentatum, Perisleria 
cerina, Odontoglossum Rossii, Brassavola, etc. 


TAPIS 


l’Orchidée cherche dans les cimes et les enfourchures des arbres 
une place où elle reçoive l’eau, la lumière et la chaleur, et elle 
y développe toute sa beauté, toute sa richesse, toute sa puissance 
végétative. M. T. Durand a bien voulu me communiquer un 
intéressant tableau statistique de la richesse en Orchidées des 
diverses contrées américaines. 614 espèces sont originaires de 
Colombie y compris le Panama, 334 du Vénézuéla, 252 des 
Guyanes, 249 de l’Équateur et 1,059 du Brésil. Dans ce nombre 


Fig. 240. — Bifrenaria Harrisoniae Loi. 


considérable d'espèces, certaines sont insignifiantes, mais c’est 
le petit nombre. Ces Orchidées se répartissent en plus de 
104 genres, les uns d'intérêt purement botanique : Abola, 
Aganisia, Altensteinia, Brachtia, Campylocentrum, Centropetalum, 
Cheiradenia, Chytroglossa, Corymbis, Leiochilus, Mormolyce, Mys- 
tacidium, Pelexia, Phymatidum, Pogoniopsis, Quekettia, Saundersia, 
Sertifera, Sigmatostalix, Solenidium, Tetramicra, Wullschlaegelia, 
Xylobium, Zygostates; les autres — ce sont les plus popu- 


ne 0 

laires — introduits en Europe et cultivés dans les serres : 
Acineta, Ada, Amblostoma, Anguloa, Arpophyllum, Aspasia, 
Bifrenaria, Bletia, Brachionidium, Brassavola, Brassia, Camari- 
dium, Cattleya, Chondrorrhyncha, Clowesia, Coelia, Coryanthes, 
Cycnoches, Cyrtopodium, Dichaea, Elleanthus, Epidendrum, Houl- 
letra, Tonopsis, Isochilus, Laelia et Laeliopsis, Lepanthes, Lochhartia, 
Lycaste, Lycomormium, Macradenia, Masdevallia, Maxillaria, 
Meiracyllium, Notylia, Odontoglossum, Oncidium, Ornithidium, 
Ornithocephalus, Pachyphyllum, Paphiopedium, Peristeria, Physo- 
siphon, Physurus, Pleurothallis, Pogonia, Polyrrhiza, Prescottia, 
Pseudocentrum, Rodriguezia, Scaphoglottis, Schlimia, Schom- 
burgkia, Scuticaria, Selenipedium, Sophronitis, Sianhopea, Stelis, 
Stenia, Trichocentrum, Trichopilia, Trigonidium, Trizeuxis, Vanilla, 
Zygopetalum. 

De ces nombreux genres, quatre seulement ne sont pas endé- 
miques à l'Amérique. Les Pogonia se rencontrent également 
en Asie et en Afrique. Les Physurus habitent aussi l'Asie. 
Les Corymbis se trouvent dans toute la zone tropicale et les 
Bletia, nous l’avons déjà fait observer, croissent en Chine et au 
Japon. 

Le nombre des espèces américaines cultivées est plus considé- 
rable que celui des espèces indiennes : cela tient à diverses 
causes, dont la principale est l’altitude moins élevée des stations 
des Orchidées indiennes. Vivant dans un climat plus chaud, leur 
culture est plus difficile. Il y a quelques années, les Vandées, 
les Renanthera, les Coelogyne, les Dendrobium, toutes ces Orchi- 
dées aux fleurs brillantes et superbes, formaient la base des 
cultures. Aujourd’hui les Odontoglossumi, les Cattleya, les Laelia, 
les Paphiopedium sont les grandes favorites de nos Orchido- 
philes. Le succès ne va-t-il pas toujours aujourd’hui aux choses 
les plus faciles ? 

Le Brésil possède 1,059 espèces, soit plus du quart des espèces 
américaines (1). Si nous admettons tous les genres crées par 
Barbosa Rodrigues (2), ce botaniste qui manie le crayon du des- 


(1) Lorsque notre ami Alfred Cogniaux aura terminé la revision des Orchi- 
dées dans la Flora Brasiliensis, ce nombre d'espèces s’accroîtra sensiblement. 
(2) Genera et species Orchidearum novarum, Part. 1 et 2, 1877 et 1882. 


PRÉ Th us 


sinateur d’une manière si remarquable, vingt-quatre genres sont 


endémiques et monotypes, onze sont endémiques et pluritypes. 


Fig, 241, — Odontoglossum cirrhosum Loz. 


FES 
Seize genres pluritypes ont, dans cette partie du monde, plus 
de la moitié de leurs espèces : A ganisia, Bifrenaria, Catasetum, 
Cattleya, Colax, Cyrtopodium, Dichaea, Zygopetalum, Octomeria, 
Spiranthes, Stlenorrhynchus, Prescottia, Cleistes, Epistephium, 
Scuticaria, Grobya. 

La partie de l'Amérique comprise entre le Mexique méri- 
dional et la Colombie mérite une mention spéciale. Dans l’état 
actuel de nos connaissances géobotaniques, la flore mexicaine 
accorde aux Orchidées le troisième rang, eu égard à leur 
importance numérique; elles viennent immédiatement avant les 
Graminées, qu’elles dépassent sensiblement quant au nombre des 
espèces! Au Mexique et dans l’Amérique centrale, les Orchidées 
représentent 8 p. °/, de la végétation phanérogamique et 37 p. °h 
des Monocotylédones. Quatre-vingt-cinq pour cent des espèces 
sont endémiques : cette proportion n’est dépassée que par une 
seule famille végétale, les Composées. 

A côté des plus belles et des plus grandes Orchidées, comme 
les Sobralia aux fleurs éclatantes et les Laelia superbiens aux 
admirables racèmes, nous rencontrons dans cette flore des 
Orchidées lilliputiennes comme les Oncidium pusillum et Crista 
gaili, certains Lepanthes et Pleurothallis, rivalisant de nanisme 
avec le Bulbophyllum minutissimum australien. Dans un même 
genre, nous trouvons des différences considérables dans la taille 
des espèces habitant le même pays : la plupart des Pleurothallis 
sont de fort petite taille, — certaines espèces atteignent à peine 
un centimètre de haut; — F. C. Lehmann a découvert dans la 
province de Cauca (Colombie) une espèce géante le Pleurothallis 
Colossus. Cette Orchidée émet une tige de 1"20 grosse comme le 
doigt, qui supporte une feuille unique, longue de o"40, large 
de o"30 et une trentaine d'épis longs de o"50 et couverts de 
plusieurs centaines de petites fleurs. 

La Colombie, le Vénézuéla, le Pérou et la république de 
l’Équateur font partie d’un territoire ayant une flore orchidéenne 
spéciale, bien caractérisée. Les genres endémiques y sont nom- 
breux ; à côté de ceux-ci, certains genres à aire plus vaste y 
sont si bien représentés qu'ils donnent un caractère spécial à la 
flore de ces pays : Altensteinia, Pterichis, Scelochilus, Anguloa, 
Elleanthus, Chondrorrhyncha, Cochlioda, Telipogon, Pachyphyl- 


RAR à 
lum, Odontoglossum, Masdevallia, Stelis, Pleurothallis, Oncidium, 
Maxillaria, etc. 
L’archipel des Galapagos situé à 500 lieues de la côte la plus 


rapprochée, possède une Orchidée endémique, l’Epidendrum 
spicatum Hook. 


XXXII. PATRIE DES ANGULOA. — Par sa grande fleur solitaire, 
globuleuse, d'un jaune éclatant, rappelant la fleur d’une Tulipe, 
l’Anguloa Clowesir (fig. 181) jouit depuis cinquante ans (1) d’une 
immense et légitime popularité, qui s'est étendue à tout le groupe 
de ces élégantes Orchidées. On ne les rencontre que dans les 
Andes de l’Amérique méridionale, à des altitudes variant de 
1,700 à 2,300 mètres, depuis la Colombie septentrionale jusque 
vers le 10° lat. S. dans les Andes péruviennes. Elles croissent 
sur des rochers couverts de mousse humide et souvent dans des 
forêts ombreuses. Les A. Clowesi, dubia, Ruckeri et uniflora 
varient souvent de forme et de coloris. 


XXXIII. PATRIE DES BIFRENARIA. — Ces Orchidées, dont la 
fleur ressemble à celle des Maxillaria et qui doivent leur nom 
générique aux doubles caudicules de leurs pollinies, appar- 
tiennent aux vallées chaudes et humides de la Guyane et du 
Brésil. Elles s'établissent sur les troncs et sur les branches des 
arbres croissant le long des rives du fleuve Essequibo et de ses 
affluents. Le Bifrenaria Harrisoniae (fig. 240) est cultivé depuis 
bien des années. Sa première introduction, due à William Harri- 
son, remonte à 1821; Gardner la retrouva plus tard, vers 1841, 
aux environs de Rio de Janeiro, sur des rochers ombragés et 
humides à Praya Vermelha,.....… localité, hélas! qui n’est 
indiquée sur aucune carte ! 


XXXIV. PATRIE DES BRassia. — Orchidées américaines, les 
Brassia habitent les îles tropicales de l’Amérique du Sud et les 
contrées continentales voisines : Guyane, Vénézuéla et Nouvelle- 
Grenade. Quelques espèces sont originaires du Guatémala et du 
Costa Rica, deux viennent des Andes du Pérou et peut-être une 
du Brésil. Les Brassia croissent sur les troncs et sur les branches 


(1) Cette plante fut_ introduite en mars 1844. 


Sr eo 


d'arbres dont le feuillage les protège des ardeurs du soleil. 
Certaines espèces se rencontrent à des altitudes élevées : tel est 
le Brassia Keiliana qui vit à 2,300 mètres dans la Cordillère du 
Nord en Colombie. 


XXXV. PATRIE DES STANHOPEA. — Les plus étranges, les plus 
extraordinaires de toutes les Orchidées cultivées, sont certes les 
Stanhopea. Tout en elles étonne et surprend: inflorescences 
radicales pendantes (fig. 130), fleurs énormes, étranges (fig. 120), 
parfums violents, couleurs vives. Ainsi que le faisait observer 
Bateman, on croirait voir des fleurs d’ivoire ou de cire parfumées 
par la mystérieuse incantation d’une magicienne orientale! 
Originaires de l’Amérique tropicale, elles croissent à des alti- 
tudes souvent élevées. Hartweg a rencontré le Séanhopea 
Bucephalus Ldl. dans les Andes à 2,000 mètres au-dessus de 
la mer. Ces hautes stations indiquent suffisamment pourquoi 
on peut les cultiver dans des serres dont la température descend 
en hiver à + 6° C. 

Le plus grand nombre des Sianhopea nous viennent du Mexique 
méridional et de l’Amérique centrale; quelques-uns se rencon- 
trent dans les Andes péruviennes et les Cordillères de la Colombie 
et du Vénézuéla. Loddiges a indiqué le Brésil comme patrie des 
Stanhopea insignis et S. eburnea, mais cette indication est plus 
commerciale que scientifique. Les Stanhopea croissent sur de 
vieux troncs d’arbres dans des stations fortement ombragées. 


XXXVI. PATRIE DES LycASTE. — La distribution géographi- 
que des Lycaste, sauf une espèce disjointe qui vit dans le sud 
du Brésil (Lycaste tetragona), se confond avec celle des Odonto- 
glossum sans atteindre toutefois l'altitude élevée de certains 
d'entre-eux. On rencontre ces Orchidées, dont la plus populaire 
est le Lycaste Skinneri (fig. 196), dans les Cordillères de l’Amé- 
rique tropicale depuis le Mexique jusqu’en Bolivie; et, nouvelle 
analogie avec les Odontoglossum, les Lycaste se concentrent à 
leur limite septentrionale et deviennent de plus en plus rares 
à mesure que leurs habitats se rapprochent de la limite méri- 
dionale. 

Leur altitude est celle des Cattleya à habitats élevés et celle 
des Odontoglossum des stations les plus basses. La température 


tr 
de ces habitats est remarquable par son uniformité. La saison 
sèche — plus nominale que réelle — y dure trois à quatre mois. 


. XXXVII. PATRIE DES MaAXxILLARIA. — Le genre Maxilliara 
se rencontre dans l’Amérique tropicale depuis le Brésil méridional 
jusqu’au Mexique; il présente une tendance manifeste à se concen- 
trer dans les Cordillères des Andes, où il atteint une altitude de 
plus de 2,000 mètres. Comme dans tous les genres à habitats 
multiples, à aire très étendue tant en latitude qu'en altitude, il 
importe de se rendre compte de l’habitat propre à chaque espèce, 
et malheureusement trop souvent l'habitat exact de celles-ci n’est 
pas relevé. On ne connaît les habitats exacts que d'un très petit 
nombre d’espèces cultivées. Les Maxillaria grandiflora habitent 
les forêts de Jaji 
dans la province 
de Merida (1,700 
à 2,000 mètres). 
Les M. luteo-alba, 
nigrescens, venus- 
ta vivent dans la 
Cordillère de Vé- 
nézuéla (1,700 à 
2,000 mètres); 
le M. porphyros- 
tele est originaire 
de la province de 
Rio -Grande du 
Sud; le M. rufes- 
cens, de Cuba; le 
M. Sanderiana, des Andes de l'Équateur ; le M. setigera, de Cara- 
cas ; le M. tenuifolia, de Vera-Cruz et le M. variabilis, du Mexique. 


Fig. 242. — Odontoglossum nebulosum Lot. 


XXXVIII. PATRIE DES ODONTOGLOSSUM. — Orchidées alpines 
par excellence, les Odontoglossum ne se rencontrent que sur 
les chaînes de montagnes qui traversent l’Amérique centrale et 
le nord de l’Amérique australe, du 20e lat. N. au 15° lat. S. Si 
leur aire de dispersion est très allongée, elle est fort retrécie 
en largeur et en hauteur. Les Odontoglossum maxillare, maculatum 


et Cervantesii sont les représentants de ce genre dont l’habitat 
est le plus septentrional: le premier, aux environs de Colima 
(Mexique) dans la Sierra Madre; les autres, près de Valladolid, 
dans les monts Irapean. La limite méridionale des Odontoglossum 
s'arrête à cette partie du continent américain où la Cordillère 
des Andes forme le plateau péruvien et bolivien. Le dernier 
représentant du genre est l'Od. compactum Rchb. f., découvert à 
Las Tres Cruzes, près de Cuzco (Pérou). Un peu plus haut, 
l'O. tetraplastum apparaît, mais ces deux espèces sont séparées 
de l’aire des Odontoglossum par un espace de plus de 800 kilo- 
mètres |! 

C’est à partir de Chachapoyas, et mieux encore de l’Équateur 
qu'on rencontre les plus belles espèces : l’Od. Halli, l’une des 
plus belles, aux fleurs jaunes munies de barres transversales et 
de macules pourpre brun; le magnifique Od. cirrhosum (fig. 241), 
aux longues hampes couvertes de grandes fleurs blanches 
maculées de pourpre brun; l’Od. Edwardii dont les racèmes se 
couvrent de centaines de fleurs violettes émettant une odeur de 
violettes, sont les premières qu’il convient de signaler. 

Au nord de l’Équateur la chaîne des Andes se divise en trois 
tronçons : la Cordillère orientale, longeant la côte du Vénézuéla 
jusqu’au Cap Paria, semble être le centre de dispersion des 
Odontoglossum surtout entre Bogota et Ocaña ; le second tron- 
çon se termine au Cap Gallinas : un certain nombre d'espèces 
ont leur habitat près de Medellin et sur ce mont Quindio, haut de 
près de 3,000 mètres, si bien exploré par Humboldt, Boussin- 
gault et plus récemment par Ed. André. Le troisième tronçon 
longe les côtes du Pacifique, traverse l’isthme de Panama et va 
s’éteindre près du haut plateau du Mexique. Le domaine de 
l'Odontoglossum ne suit pas ce dernier rameau dans toute son 
étendue. 

Les Odontoglossum disparaissent dans les localités de l’isthme 
dont l’altitude ne dépasse pas 50 mètres; elles reparaissent sur 
les montagnes. Nous y rencontrons les Od. chiriquense et Od. ca- 
riniferum découverts tous les deux par Warscewicz aux environs 
de Veragua. A Costa Rica nous trouvons les Od. Krameri, 
Od. Oerstedii et Od. Schlieperianum. À partir de ces stations, 
l’'Odontoglossum augmente en force et en nombre à mesure que 


— 381 — 


l'altitude de celles-ci s'élève. Leurs habitats atteignent au 
Mexique 2,300 à 2,700 mètres. Les environs d'Oaxaca renfer- 
ment le plus grand nombre de belles espèces. Le domaine de 
l’Odontoglossum s'arrête aux environs de Colima, dans la Sierra 
Madre mexicaine (Od. maxillare). 

Orchidées montagnardes par excellence, ayant besoin d’un air 
pur et sans cesse renouvelé, les Odontoglossum occupent une 
zone s’étendant en altitude de 1,700 à 3,000 mètres. Fort rare- 
ment, des espèces comme les Od. densiflorum Ldl. et Od. com- 
pactum Rchb. f., dépassent cette limite et atteignent 3,700 à 
4,000 mètres d’altitude. 

Ces dernières espèces sont les seules qui croissent sur des 
rochers au-dessus de la limite des arbres. En général les 
Odontoglossum se rencontrent surtout dans les forêts basses 
qui couvrent le sommet et les pentes des plus hautes chaînes de 
la Cordillère, les plus rapprochées de l'Océan Pacifique. 

Les arbres qui portent les Odontoglossum, sont presque tou- 
jours de petite taille; ils ont 
les branches et la tige cou- 
vertes de différentes mousses 
qui s’accrochent à leur écorce. 
Une humidité abondanterègne 
dans ces forêts.Ce n’est qu’au 
milieu du jour, au moment où 
le soleil acquiert toute sa 
force, que les feuilles et les 
branches de ces arbres com- 
mencent à se sécher un peu. 


À 
( El | Ne 
Va 
Vers le soir, elles sont mouil- Fig. 243. — Odontoglossum corona- 
lées de nouveau par les épais rium Loz, 


, 


nuages qui s’élèvent des vallées et, séjournant pendant toute la 
nuit, baignent de leur féconde rosée les racines et les feuilles 
de ces plantes. « J'ai presque toujours observé, dit Bungeroth, 
« qu’il régnait dans ces forêts une atmosphère très fraîche même 
« pendant le jour, et qu’elle descend parfois la nuit, à une tem- 
« pérature inférieure à zéro ». 

Les forêts peu élevées qui couvrent les chaînes des Andes 
laissent pénétrer partout les rayons du soleil, mais le ciel est 


presque toujours couvert de nuages et les brouillards pérpétuels 
ne laissent jamais les rayons du soleil darder avec toute leur 
énergie sur les plantes. On rencontre les Odontoglossum surtout 
à la lisière des forêts; l’air circulant en abondance donne à 
leurs racèmes fleuris ces longs balancements, harmonieux et 
lents, comme les gestes du rite d’une religion universelle; car 
ces plantes ne sont pas soumises aux rafales des contrées 
indiennes, ni aux tornades terribles de l'Afrique, ni à ces 
longues saisons de pluies où toutes les cataractes du ciel semblent 
ouvertes sur la terre. 

La Llave et Lexarça décrivirent les premiers les Odontoglossum 
des environs de Valladolid. Les voyageurs qui ont doté nos serres 
des plus belles espèces sont presque tous ceux dont nous avons 
cité les noms précédemment : Ure Skinner importa du Guatémala 
en 1835 le premier Odontoglossum (l’O. bicioniense Läl.) et en 
1839, l'espèce la plus grande et la plus florifère l'O. grande LdI. 
Après lui viennent le Baron Karwinski (1836), Ross (1837-1839), 
Colonel Hall (1837), Hartweg, Linden (1840-1844), Funck et 
Schlim (1847), Warscewicz (1848), Dr Jameson (1850), Blunt 
(1863-65), Ghiesbreght (1864), Kramer (1868), G. Wallis (1868), 
Bruckmäüller (1870), Roezl (1872), Jean et Edouard Klaboch 
(1875), Kalbreyer (1879), etc., etc. 


XXXIX. PATRIE DES ONcipIuM. — De tous les genres d'Or- 
chidées, aucun ne renferme autant d’espèces dont la patrie est 
inconnue ou incertaine. Essentiellement américaines, on les 
rencontre dans l'Amérique du Sud, depuis le 35° de latitude 
sud jusqu’au 20° de latitude nord. Sur ce vaste territoire, les 
espèces sont disséminées, le plus souvent localisées, parfois 
même disjointes. Les Oncidium Cebolleta (fig. 46), et On. iridi- 
folium semblent les plus remarquables à ce point de vue. 

La distribution géographique des Oncidium présente trois 
centres de végétation bien distincts : les montagnes des Orgues 
situées dans les provinces de Rio de Janeiro, Minas-Geraës et 
Saint-Paul, — les Andes de l'Équateur, — la Cordillère du Nord. 
Aucun genre ne présente autant de diversités dans son habitat. 
Certaines espèces (On. carthaginense et On. Lanceanum (fig. 168)) 
croissent dans des vallées chaudes et humides, ou près des côtes; 


— 383 — 


d’autres (On. cucullatum) sont des plantes alpines, s’établissant 
dans les Andes des Cordillères presque à la limite des neiges 
éternelles. Les espèces à feuilles équitantes (On. triquetrum, 
O. pulchellum, O. tetrapetalum, O. urophyllum, etc.) sont confinées 
dans les îles des Antilles et sur les côtes avoisinantes. Certains 
Oncidium (©. ampliatum) viennent des vallées chaudes et humides 
du golfe de Nicaya (Costa-Rica) et des bords du Magdalena; d’au- 
tres ont des habitats moins chauds, à des altitudes plus élevées : 
l'On. auriferum fut découvert par Funck et Schlim au Vénézuéla 
à une altitude de 1,700 à 2,300 mètres; les Orchidées brési- 
liennes, On. divaricatum, flexuosum, Forbesii, Gardneri, longipes, 
monoceras, phymatochilum, puluinatum, trulliferum, etc. sont ori- 
ginaires de stations situées dans la Chaîne des Orgues; l'On. exca- 
vatum qui habite le Pérou septentrional, les Andes de l’Équateur 
a une station près des sources de l'Amazone; l’On. hastatum est 
abondant à Colima, près du Pacifique; l'On. sphacelatum à la 
luxuriante floraison croît au Mexique et au Guatémala; l'On. 
Wentworthianum a été récolté dans les montagnes guatémalienes 
de Santa-Rosa, et l’On. sessile en Colombie, etc., etc. Comme on 
le voit, la plupart de ces espèces viennent des pays où les 
stations de Cattleya et de Laelia sont abondantes; il n’est pas 
rare de trouver un Oncidium (O. sessile) ayant ses racines 
enchevêtrées dans une touffe de Cattleya (C. Z. var. Mossiae). 

Les Oncidium occupent un territoire plus considérable encore 
que les Odontoglossum. Ils s'étendent de 
Montévidéo (35elat.S.), à Colima (2o°1lat. N.). 
Ce genre est représenté par des centaines 
d'espèces. 

Du côté des Andes, le domaine des Onci- 
dium s'arrête plus tôt (On. heteranthum ou 
On. Weddelli en Bolivie), que du côté de 


Fig. 244. — Oncidium 


l'Océan Atlantique : les On. bifolium et  barbatum Loz. 


On. viperinum croissent encore sur des troncs d'arbres aux 
environs de Montévidéo. Les stations les plus septentrionales 
du genre sont occupées par l’On. tigrinum et l'On. hastatum dé- 
couverts par Roezl aux environs de Colima (20° lat. N.) près 
de l’Océan Pacifique. 

Depuis le vice-amiral Bligh qui importa à Kew en 1793 les 


er — 

premiers Oncidium (On. triquetrum (fig. 46, c), On. altissimum, 
il n’est guère de botaniste explorant le Brésil ou l’Amérique 
centrale qui n’ait apporté son contingent de découvertes à nos 
collections. 

De nombreux Oncidium habitent des localités dont la tempé- 
rature est froide; ils y vivent côte à côte avec les Odontoglos- 
sum. L’On. cheirophorum croît à 2,600 mètres d’altitude sur des 
chènes couvrant les rudes côtes du volcan Chiriqui (Veragua); 
l’On. ornithorhynchum se rencontre au Mexique et au Guatémala à 
des altitudes élevées; l’On. incurvum s'établit de 1,300 à 1,700 
mètres, au Mexique, à la même altitude que l’On. leucochilum, 
espèce guatémalienne et mexicaine; l’On. macranthum croît à 
Tunguragua, village de l’Équateur, situé à 3,300 mètres d’alti- 
tude; l’On. tigrinum aux variétés multiples, occupe des stations 
nombreuses dans les monts Irapean, dans le Michoacan et dans 
les montagnes voisines de la côte du Pacifique, etc., etc. 

Sir Ralph Woodford, un haut fonctionnaire anglais, a enrichi, 
dès 1824, nos cultures de l’admirable Oncidium Papilio (fig. 166), 
l’une des plus jolies Orchidées américaines. Cette Orchidée, ainsi 
que les On. Kramerianum et On. Limmingher, ses proches alliés, 
est originaire des Antilles et des républiques de Costa-Rica et 
de l'Équateur; on les y rencontre à des altitudes inférieures 
toujours à 1,000 mètres. 

Les Oncidium à feuilles charnues et à pseudo-bulbes fort peu 
apparents méritent une mention spéciale; elles ont un tempéra- 
ment assez délicat. Les plus connues de ces Orchidées sont l’Ox. 
bicallosum et son voisin l’On. Cavendishianum (fig. 46, A), origi- 
naires du Guatemala, l’On. carthaginense qui habite l’ Amérique 
centrale, le Mexique et la Jamaïque, l’On. Bauer: dont le racème 
atteint plusieurs mètres dans sa patrie, la Guyane anglaise; 
les On. haematochilum et Lanceanum (fig. 168), espèces presque 
semblables qui habitent, la première la Nouvelle-Grenade, 
et l’autre la Guyane (Surinam); l’On. luridum, dont les nom- 
breuses variétés se retrouvent à la Trinité, dans les Guyanes, 
au Mexique, à Cuba, à la Jamaïque, etc. Toutes ces Orchidées 
recherchent des stations ombragées, situées dans des vallées 
chaudes et humides.L’On. varicosum, var. Rogersii (fig. 215), aux 
admirables racèmes pluriflores, croît sur les troncs de grands 


arbres dans la province brésilienne de Saint-Paul, près du 
village d’Ytu, et réclame moins de chaleur. En général, tous les 
Oncidium sont intéressants, quelques-uns par la beauté de leurs 


Fig. 245. — Cattleya Alexandre Rorre. 


formes (On. varicosum, On. Papilio, etc.), la plupart par leur poly- 
morphisme (On. ornithocephalum, fig. 169), par l'incroyable 
25 


— 386 — 


variabilité de leur coloris (On. barbatum, fig. 244), ou par lé 
grand nombre de leurs fleurs (On. spacelatum). 


XL. DOMAINE DES CATTLEYA ET DES LAELIA. — Le qua- 
trième genre américain à aire de dispersion très étendue est 
le genre Cattleya auquel nous joignons le genre Laelia. Le 
domaine de ces Orchidées s'étend sur un immense territoire 
limité au Nord par le tropique du Cancer, au Sud par le 30° 
parallèle. On y reconnaît trois centres de dispersion. Le premier 
comprend la partie méridionale du Mexique et le Guatémala. Le 
second centre occupe la partie septentrionale de l'Amérique du 
Sud, qui s’étend entre la Cordillère occidentale néo-grenadienne 
et la Guyane anglaise. Le troisième centre est dans les provinces 
maritimes du sud du Brésil. Dans ces trois centres, les habitats 
cattleyens sont tous très élevés. 

Les plus beaux Laelia mexicains, les L. albida, anceps (fig. 249), 
autumnalis (fig. 195), purburacea, glauca, majalis(G), etc.), 
habitent comme le Cattleya citrina (fig. 246), des localités situées 
dans les terres tempérées et même froides (Terra fria). À 2,000 
et 2,700 mètres d’altitude, la température moyenne varie de 
10 à 20° C; sous les rayons du soleil tropical la température 
monte à 40° et à 50° C. Comme dans le domaine des moussons 
tropicales, nous retrouvons ici la régulière alternance des saisons 
sèches et pluvieuses à cette différence près que, dans la saison 
chaude, les brises salines de l'Océan apportent toujours aux 
plantes pendant la nuit une abondante et salutaire rosée. 

Les Cattleya de la région colombienne occupent des habitats 
moins élevés (900 à 1,700 mètres). Ces espèces — et parmi elles 
la plus grande partie de l’admirable groupe des C. labiata — 
croissent dans des vallées et des ravins, sur des branches d’arbres 
ou sur des rochers (fig. 245). 

Les Cattleya se trouvent exposés à la fois à des différences con- 
sidérables de température (2) et aux abondantes pluies provoquées 
par le voisinage de l’Océan Atlantique. Les hautes chaînes des 


(1) Hartweg trouva cette jolie orchidée à San Bartholo, localité très élevée 
où la gelée se fait souvent sentir! 


(2) Température diurne 40°, température nocturne 100. 204 


= 387 = 
Cordillères divisent l’ Amérique centrale en deux régions clima- 
tériques absolument différentes. Tandis que sur les versants 
tournés vers l’Atlantique il pleut toute l’année, du côté de 
l'Océan pacifique, deux saisons bien tranchées partagent l’année: 
une saison des pluies (mai-novembre) et une saison sèche 
(décembre-avril). Les vents alizés, pendant presque toute l’année, 
soufflent de l'Est à l'Ouest, sur l'Océan Atlantique: ils se satu- 
rent de vapeurs empruntées aux immen- 
ses étendues d’eau sur lesquelles il à 
passent et sont la cause de ces abon- À 
dantes précipitations. Même dans les | 
stations où de décembre en avril aucune 
goutte d’eau ne tombe, la rosée, plus 
abondante en ces pays que dans n’im- 
porte quelle contrée d'Europe, vient 
rendre aux plantes l’humidité nécessaire 
au fonctionnement de leurs tissus. 

La Guyane anglaise offre une région 
fort propice au développement des Orchi- 
dées, le long du Kookenaam, dans les 
vallées des monts Roraima; le C. Lawren- 
ceana et ses nombreuses variétés y ont 
leurs habitats. Le Honduras a doté nos 
cultures du joli C. Bowringiana; il croît 
près des chutes d'eau, dans une atmos- 
phère très échauffée, mais humide. De 
tous les Cattleya, l’espèce dont l’aire de 
dispersion est la plus étendue, le Cattleya 
labiata Ldl. (fig. 247) aux, multiples 
variétés s'étend depuis Costa-Rica (C. L. 
var. Dowiana) jusqu'au Brésil; dans la 
Guyane, nous trouvons le plus grand 


nombre de belles variétés. A l'exception Fig. 246, — Caitleya citrina. 
des C.L. var. Warscewiczii etC.l. var. Hardyana (hybride naturel?) 


les variétés de C. labiata habitent des stations parfaitement 


distinctes... L'espèce type a été découverte dans les montagnes 
des Orgues, voisines de Rio de Janeiro, à plusieurs centaines de 


-mèêtres d’altitude. Le Brésil nous a donné encore le C. . var. 


Eldorado; il croît dans une station plus chaude, près du confluent 
du Rio-Negro et de l’Amazone. Le C. labiata var. Warneri, la 
plus voisine, comme habitat et comme forme, du C. labiata est 
encore une variété brésilienne. Costa-Rica a fourni à nos collec- 
tions le C. L. var. Dowiana et une magnifique sous-variété le C. L. 
var. Dowiana aurea. Du Vénézuéla furent introduits le C. L. var. 
Gaskelliana, le C. l. var. Luddemanniana dont les innombrables 
sous-variétés habitent des stations situées à une altitude peu 
élevée et voisines de la mer. Le C.l. var. Mossiae (fig. 37, A) est 
une des belles Orchidées polymorphes connues; ses nombreuses 
variétés croissent en abondance dans les montagnes du Nord, 
entre Porto-Cabello et Cape-Codera. Le C. /. var. Parciviliana vit 
à une altitude de plus de 1,300 mètres sur des rochers exposés 
aux ardeurs du soleil, mais situés à proximité de cours d'eau. 
Les collecteurs ont découvert dans la Cordillère orientale de la 
Nouvelle Grenade, entre Pampelune et Bucamaranga, le C. L. 
var. Mendelii (fig. 120) et l’admirable C. /. var. Trianae (fig. 248). 
On rencontre ces Orchidées sous les formes les plus différentes 
entre le second et le cinquième parallèle nord dans les trois 
Cordillères. Le superbe C. Z. var. Warscewiczir, appelé C. gigas 
dans maints catalogues horticoles, a des stations éparses entre le 
cinquième et le septième parallèle nord; il croît sur les arbres, 
près des rivières; ses formes diverses ont entre elles une res- 
semblance beaucoup plus grande que celle des variétés du C. L. 
var. Trianae. 

Nous devons ajouter à ce groupe de superbes Cattleya, toute 
une série de Laelia tels que le Laelia Digbyana (fig. 33 B, etc.), 
originaire du Honduras, le Laelia pumila, de la Guyane britan- 
nique (Essequibo), le ZLaelia superbiens, du Guatémala. Ces 
Orchidées prennent place au premier rang de nos plus jolies 
plantes de serre. À ces Laelia, nous devons rattacher le 
Laelia monophylla au périanthe écarlate; c’est le seul Laelia 
croissant en dehors du continent américain, dans l’île de la 
Jamaïque, à une altitude variant de 1,100 à 1,700 mètres. 

Les Cattleya et les Laelia de la région Sud-brésilienne, aux 
colorations chaudes et délicates, croissent le long de la côte 
de Bahia à Porto-Allegro, dans ces montagnes qui s’élèvent 
lentement vers l’intérieur du pays où les hauts sommets des 


Fig. 247. — Cattleya labiata Loz. 


— 300 — 

montagnes des Orgues arrêtent les nuages formés sur l’Océan 
et provoquent des pluies fécondes et abondantes pendant toute 
l’année. 

A côté des Cattleya labiata dont nous venons de parler, le 
Brésil fournit à nos collections le magnifique C. Acklandiae 
(fig. 191), originaire de ces terres arides (The Campos) dont la 
température serait torride si elle n'était rafraîchie par les brises 
marines: le C. bicolor dont les touffes souvent volumineuses 
s’établissent aux fourches des branches des grands arbres 
surplombant les cours d'eau. Le Cattleya Forbes: est aussi 
originaire du Brésil; il croît sur des rochers et des arbres peu 
élevés, dans le voisinage de la mer. Le Cattleya guttata et 
ses variétés dont le C. g. var. Prinzii (fig. 190) et C. g. var. 
Leopoldi sont peut-être les plus jolies, croissent dans les 
provinces brésiliennes de Bahia, Minas Geraës, Rio de Janeiro, 
San Paolo et Santa Catherina, tantôt sur des arbres isolés, 
tantôt à la lisière des forêts. Les mêmes provinces renferment 
de nombreuses stations de C. intermedia (fig. 119). Dans cette 
contrée brésilienne qui s’étend entre la chaîne des Orgues et le 
Rio de la Plata d’une part, l'Océan Atlantique et la rivière 
Uruguay d’autre part, nous trouvons, sur des roches ou sur 
des arbres, le C. Loddigesii et sa plus belle variété, le C. Loddigesii 
Haryrisoniae. Aux environs de Bahia, on rencontre le C. Schille- 
Yiana aux formes polymorphes. Dans le Brésil septentrional, le 
C. superba croît dans des stations éparses sur un territoire de 
près de deux cent lieues, le long de l’Amazone depuis sa 
sortie du Pérou jusqu’à son confluent avec le Rio Negro; cette 
plante irradie au Nord en Colombie, au Vénézuéla et en Guyane. 
C'est encore au Brésil, le long des rivières, que croissent le 
C. Walkeriana, cette jolie conquête de Gardner et de Libon, et 
peut-être ces Caitleya Alexandrae (fig. 245) et Cattleya Victoria 
Regina (fig. 36) dont les habitats vrais sont encore mystérieux. 

Dans le vaste écrin où nous venons de trouver ces admirables 
bijoux végétaux, nous rencontrerons, rivalisant de beauté et 
d’éclat, toute une série de superbes Laelia. Originaires de la 
province brésilienne de Minas Geraës, le Laelia cinnabarina, 
le L. crispa et ses variétés croissent sur des roches exposées au 
soleil, ayant leurs racines protégées par les graminées, les 


or — 
mousses et les autres végétaux voisins; ces plantes vivent à une 
altitude qui varie de 750 à 1,200 mètres. Citons encore les 
Laelia flava, grandis, Fongheana, xanthina, lobata, Perrinii, et le 
si curieux L. harpophylla dont l'habitat est toujours inconnu. 
Le Laelia Dominyana atteint dans les montagnes de Rio de 
Janeiro une altitude variant de 500 à 700 mètres. La province 
de Sainte Cathérine au Brésil est privilégiée; on y trouve le 
Laelia Lindleyana, le C. 1. var. Leopoldi, et l'admirable Laelia 
purpurata(fig. 250), jolie importation du Gantois François de Vos, 
Orchidée dont le labelle blanc, ondulé, sinué et crispé sur les 
bords est sillonné de stries éclatantes pourpre et jaune d’or. 
Une espèce brésilienne, la plus petite, le C. luteola, a des stations 
au Pérou où Roezi la collecta. Une autre espèce, le C. maxima, 
croît sous diverses formes, dans l’Equateur et dans les districts 
les plus septentrionaux du Pérou. 

Le Caitleya citrina (fig. 246) se distingue de ses congénères 
par sa forme et par son port. Petite plante à pseudo-bulbes 
ovoïdes, elle porte au sommet de chacun de ceux-ci deux 
feuilles glauques. Les fleurs jaunes rappellent celles de notre 
Tulipa sylvestris; mais elles sont pendantes et naissent presque 
toujours, par paires, sur les pédoncules. Espèce propre au 
Mexique, on l’y rencontre fréquemment sur les chaînes de 
montagnes et les plateaux élevés (2,000 à 2,900 mètres) entre 
les parallèles 17 et 20 de latitude septentrionale. D’après le 
témoignage d'Hernandez les indigènes lui donnaient le nom 
populaire de Corticoatzontecoxohcitl. Il est évidemment préférable 
de désigner cette plante par son nom latin! 

Les Catileya croissent généralement sur la lisière et dans les 
clairières des forêts, là où lumière et chaleur du soleil peuvent 
librement leur arriver. C’est surtout sur un arbre, l'arbre- 
calebasse (Crescentia) que ces Orchidées épiphytes se plaisent : 
« Dans les Républiques Sud-américaines, dans les parties les 
plus chaudes de l’Amérique du Sud, presque chaque habitation 
est entourée d’une petite plantation de Bananiers, de Cannes à 
sucre, de Caféiers, etc. Presque partout, dit Bungeroth, j'ai 
trouvé quelques arbres-calebasses étendant au milieu de ses 
plantes leur beau feuillage vert clair; très souvent leurs branches 
sont littéralement couvertes d’Orchidées de genre et d'espèce 


3 
divers. Plus d’une fois, j'ai vu de vigoureux Schomburgkia mélan- 
geant leurs longues tiges florales avec celles de quelques beaux 
Cattleya, en grands exemplaires, en partie abrités par les 
branches supérieures de cet arbre étrange, splendidement ornées 
elles-même de Rodriguezia, d'Ionopsis, de petits Oncidium, et 
d’autres genres peu volumineux (1) ». 

Nous avons déjà cité un grand nombre de ceux auxquels nous 
devons l'introduction de ces belles plantes, les plus colorées et 
les plus admirées du groupe américain. Aux noms illustres de 
Warscewicz, de Linden, du D' Gardner, d'Ure Skinner, de 
Schomburgk, du D' Martius, de Karwinsky, d’'Hartweg, etc., 
nous devons joindre ceux d’Arnold (1882), de Forbes (1825), 
de F. Devos (1850), de Henchman (1837), de Morris (1881), de 
George Syme (1882) etc. Malheureusement tous n'ont pas donné 
sur les stations où ils ont rencontré les Orchidées, des renseigne- 
ments précis, minutieux et détaillés. Tandis qu’il en est comme 
les C. citrina qui vivent dans des climats tempérés presque froids, 
il en est d’autres comme le C. Acklandiae, C. labiata var. Eldo- 
vado, C. guttata var. Prinzit, C. Schilleriana, C. superba, Laelia 
grandis, L. xanthina, etc. qui, venant de stations peu élevées, 
demandent une atmosphère moins souvent renouvelée et une 
température plus chaude et plus humide. 


XLI. DOMAINE DES MAsDEVALLIA. — Après les Epidendrum, 
les Odontoglossum, les Oncidium, les Cattleya et les Laelia, 
viennent à raison de leur nombre et de leur importance horti- 
cole, les Masdevallia(2). Orchidées alpines par excellence de 
l'Amérique tropicale, elles habitent les montagnes qui s’étendent 
du Pérou jusqu’au Mexique. Leur principal habitat se trouve 
aux environs de Sonson, de 2,000 à 2,500 mètres d'altitude, dans 
une région où Roezl constatait en même temps que l’abondance 
des pluies, l’abaissement considérable (O° C) de la température 
matutinale (3). 


(1) L’arbre-calebasse ne dépasse pas sept mètres de hauteur. 

(2) Plus de quatre-vingts espèces sont cultivées, mais les plus recherchés 
sont les M. Chimaera, coccinea, Davisit, elephanticeps, Harryana, ignea, poly- 
stacha, caudata var. Shuttleworthii (fig. 176), Schlimii (fig. 176bis), tovarensis, 
Veitchiana (fig. 153), triaristella (fig. 34), etc. 

(3) L'Orchidophile, année 1883, p. 643. 


Res 0: Non 


Quelques espèces sont brésiliennes(M. infracta, p.ex.); deux ou 
trois autres ont été récoltées sur le Roraima dans la Guyane 


anglaise, d’autres enfin viennent des montagnes qui longent la 
côte vénézuélienne, mais la plus grande partie de ces plantes 


Fig. 248. — Cattleya labiata Lou. var. Trianae Rous. f. 


"204 

aux fleurs étranges ou gracieuses habitent les Cordillères occi- 
dentales. Les Andes Péruviennes depuis le 15° parallèle Sud, 
en contiennent un grand nombre, éparses tantôt dans la zone 
des Odontoglossum, mais le plus souvent à des altitudes supé- 
rieures, au dessus de la limite de la végétation arborescente 
(4,300 mètres). Au nord de Medelin (450 lat. N. et 76°50" de 
longitude), les Masdevallia deviennent moins abondants dans la 
Cordillère centrale, tandis que sur la chaîne orientale de Soga- 
mosa à Ocaña, nous rencontrons les espèces les plus brillantes, 
les plus recherchées, les Masdevallia coccinés : M. amabilis, 
Barlacana, coccinea, Davisii, ignea, militaris, rosea, Verichiana 
(fig. 153), escaladant les sommets les plus élevés et parsemant 
de fleurs rouges étoilées, le vert des mousses et des gazons au 
milieu desquels ils croissent. Le long de la Cordillère occiden- 
tale, de Popayan au Nord jusqu’à Antioqua, les Masdevallia de 
la tribu des Saccolabiées (M. bella, chimaera, Carderi, Houtiteana, 
etc.) ont l'humeur moins montagnarde : ils habitent des hauteurs 
moindres. Au Nord de l’isthme, les espèces sont plus éparses. 
Quelques formes intéressantes nous viennent de Costa-Rica: 
M. triaristella (fig. 34); au Nord, elles sont plus rares et le 
territoire mexicain ne nous en fournit guère. 

Dans les stations péruviennes où les Masdevallia se rencon- 
trent, l'air est plus sec, moins humide : la pression de l'air y est 
moins forte et la température moins élevée. Dans certaines loca- 
lités, la température moyenne ne dépasse pas 7° C; dans les jours 
clairs, il n’est pas rare de voir cette température osciller entre 
15° C pendant le jour et zéro pendant la nuit. Par suite de 
l'abondance des précipitations aqueuses sur le versant de ces 
montagnes, l’air est constamment chargé d'humidité. Celle-ci 
est plus considérable encore dans les stations des Cordillères de 
la Nouvelle Grenade et du Vénézuéla où la saison pluvieuse 
dure la plus grande partie de l’année. 


XLII. DoMAINES DES PAPHIOPEDIUM. — À la différence des 
Cypripedium, hôtes des zones boréales, aucun Paphiopedium 
n'apparaît en Europe. On ne rencontre aucun représentant de 
ces genres dans les flores de l’Australie, de l’Afrique et des Iles 
Mascareignes. Les Paphiopedium sont en revanche fort nombreux 


— 395 — 
en deux points presque opposés du globe, en Asie et en Amérique. 
C’est un très bon exemple de genre ayant deux centres de 
végétation bien distincts : l’un de ces centres couvre les Indes 
et l'Archipel malais, du 27° latitude nord au ro° latitude sud, 
entre les 75° et 150° méridiens est; l’autre centre est dans 
l’Amérique du sud, du rot lat. N. au 25° lat. S. 

Les Paphiopedium asiatiques sont confinés dans les îles et les 
presqu’îles de cette partie du monde, les plus exposées aux 
moussons tropicales. Leurs espèces s’échelonnent le long des 
montagnes; elles s’y établissent tantôt solitaires, tantôt réunies 
par deux ou trois, à des altitudes différentes, souvent fort élevées 
(1,500 à 2,000 mètres), mais toujours dans des stations où la 
saison sèche est fort courte, et où les pluies sont fréquentes et 
abondantes. Les Paphiopedium asiatiques peuvent se répartir en 
deux groupes : ceux à hampe uniflore: P. barbatum (fig. 12), 
P. villosum (fig. 74), insigne (fig. 260), p. ex. et ceux à hampe 
pluriflores : P. Haynaldianum, laevigatum, Lowi, Parishi, 
Stonei, etc. 

La section des Uniflores comprend deux classes bien dis- 
tinctes par leur feuillage : l'une renferme les espèces à feuilles 
vertes unicolores, telles que les P. hirsutissimum et insigne 
(fig. 260), déjà si souvent cités, introduits depuis longtemps du 
Népaul; ces formes à feuilles vertes unicolores habitent toutes 
les continents asiatiques. L'autre classe comprend les formes 
à feuillage maculé, ayant entre elles grand air de famille : 
P. Aygus, barbatum, biflorum calceolare, callosum (fig. 270), 
Lawrenceanum, nigratum, Hookerae (fig. 230), Bullenianum, 
Dayanum, javanicum, virens, niveum, concolor (fig. 13, c), etc. 
Elles croissent à des altitudes dépassant mille mètres dans des 
iles si étendues qu'elles sont presque des continents : P. java- 
nicum de Java, P. ionsum de Sumatra, etc. Si on excepte le 
P. venusium qui irradie au Népaul et le P. purpuratum de 
Hongkong, l'aire de ce groupe est fort restreint. 

Toutes les espèces pluriflores sont insulaires, sauf le P. Pa- 
vishi, originaire du Moulmein, ce ménechme du P. laevigatum 
des îles Philippines : on les reconnaît tous deux aisément à 
leurs feuilles unicolores vertes, coriaces, plus longues que celles 
des Paphiopedium uniflores et rappelant celles des Paphiopedium 


américains. Ces Orchidées habitent toutes des zones chaudes et 
vivent dans une atmosphère dont la saturation est constante et 
la température moyenne élevée, presque uniforme. Dans cette 
même zone, nous rencontrons quelques autres Paphiopedium : 
P. Argus (fig. 67 à 69) et ses variétés, P. ciliolare, P. Hayna- 
dianum, P. philippinense (fig. 229), P. Lawrenceanum (fig. 70), 
P. Hookerae (fig. 230), P. Lowii, P. Stonei, P. niveum, P. bella- 
tulum (fig. 192), P. concolor (fig. 13, c), etc. Toutes ces 
Orchidées réclament plus d'humidité et plus de chaleur que les 
espèces vivant à des altitudes supérieures. 

A la section des Paphiopedium montagnards, nous pouvons 
inscrire les P. barbatum (fig. 12) et P. superbiens du Mont Ophir 
situé dans la presqu'île de Malacca; le P. Curtisii dont les 
stations se trouvent aux environs de Padang (Sumatra) depuis 
1,000 jusqu’à 1,300 mètres; le P. venustum, le plus ancien des 
Cypripèdes indiens introduits en Europe, originaire des mon- 
tagnes du Sylhet; le ravissant P. Spicerianum de l’Assam; le 
P. villosum (fig. 74), dont les stations dépassent toujours, dans 
les montagnes du Moulmein, 1,300 mètres d'altitude; le P. Daya- 
num, retrouvé par Peter Veitch dans les monts Kina Bala de 
Bornéo; le P. Drurii habitant une station isolée, fort éloignée, 
dans les monts Travancore etc., etc. 

De même que la plupart de leurs congénères asiatiques, les 
Paphiopedium américains se rencontrent à des altitudes élevées 
(de 1,000 à 1,800 mètres d’altitude). Les montagnes des Cordil- 
lères de l'Amérique du Sud renferment leurs principaux habitats, 
à partir du 1o° latitude Nord jusqu’au 26° latitude Sud. Le plus 
grand nombre se rencontrent dans la Cordillère occidentale 
depuis la Bolivie jusqu’à Chiriqui dans l'Amérique centrale. 

Le plus original peut-être de tous les Cypripèdes, le Paphio- 
pedium caudatum croît tantôt sous les broussailles, tantôt en 
plein soleil, dans le district de Huanaco, au Pérou, et dans le 
district de Caupolica, dans les Andes équatoriennes. Le Paphio- 
pedium caudatum var. Lindeni fut élevé au rang de genre distinct 
par Lindley sous le nom d'Uropedium Lindeni. Ce n’est toutefois 
qu’une forme pélorique, mais elle est spontanée. Cette Orchidée 
nous montre, au lieu du labelle en sabot des Cypripédinées, un 
labelle rubané presque semblable aux autres pièces sépalaires 


rs 14 
de la fleur. C’est donc une sorte de régression qu’éprouve 
le périanthe, qui devient ainsi plus semblable à un périanthe 
régulier. Nous avons, dans les serres, constaté maints exemples 
de cette modification sur des formes génériques variées; mais le 


Fig. 249. — Laelia anceps LoL. var. Ashwortiana SaxD, 


grand intérêt de l'exemple fourni pat l'Uropedium, c'est son 
existence à l'état sauvage. Cette forme anormale a donc une cer- 
taine stabilité : elle nous montre la nature s’essayant à édifier 
une forme nouvelle; elle nous fait assister au long et laborieux 


— 398 


travail de la génèse des espèces(1). Elle fut découverte dans 
diverses parties de la Nouvelle-Grenade, à des altitudes de 
1,250 à 2,300 mètres; elle croît isolément sur des arbres ou des 
troncs morts, sur des rochers, mais toujours près de la mer. 

Le Pérou renferme les Paphiopedium Boissierianum, Wallisii; 
Warscewiczii; la Bolivie et le Pérou nous donnent le P. carici- 
num, souvent cultivé sous le nom de Cypripedium Pearcei; le 
Panama fournit le P. Hincksianum ; la république de l’Équateur, 
les P. Hartwegii et reticulatum. Dans la Guyane, les P. Klotz- 
schianum et P. Lindleyanum, proches parents du P. caricinum 
bolivien, croissent dans les effritements, les crevasses et les 
fissures du granit des roches des monts Roraima, avoisinant les 
bords du Rue et les chutes du Rueimecru. 

Le long des cours d’eau, dans les Cordillères de la Nouvelle 
Grenade, le P. longifolium (fig. 13, D), et ses belles variétés 
P. gracile, Roezlii, etc, ont été récoltés dans diverses stations : 
ils croissent à l’ombre des arbres dans les mousses et les détritus 
végétaux; on les rencontre près de Chiriqui et de l’isthme 
Darien, à des altitudes variant de 1,300 à 2,300 mètres. C’est, 
dit-on, près d'Ocaña, c'est-à-dire à une altitude élevée, que le 
très intéressant P. Schlimir: fut découvert. 

De même que les Paphiopedium indiens, ceux de l’Amérique 
nous présentent une espèce exilée, le P. vittatum; nous trouvons 
cette Cypripédinée dans la chaîne des Orgues, au Brésil, à cent 
lieues des autres Paphiopedium. 

Rappelons en terminant que, à la différence des Paphiopedium 
asiatiques qui sont à ovaire uniloculaire, ceux de l'Amérique 
sont à ovaire triloculaire. Tous ont donné dans nos serres des 
hybrides nombreux : le premier hybride fut le P. Harrisianum 
(fig. 205); il provint de la fécondation du P. villosum (fig. 74), 
par le P. barbatum (fig. 12); il intervint à son tour dans Ia 


(1) Le lecteur désireux d'étudier la curieuse tératologie des Cypripédinées 
et des Orchidées, devra consulter. les excellents travaux que M. Maxwell 
T. Masters a publié sur cette question : On the Floral Conformation of the 
genus Cybripedium Journ. Lin. Soc. vol. XXII, 1887, p. 402. — Orchids 
Single and Double, Gardener's Chronicle. — Teratology of Orchids dans le 
Manual of orchidaceous plants de Veitch, pars X, p. 37. — Vegetable de 
logy, 1869, traduit en allemand., Leipzig. Haessel, 1886. 


Re 
naissance du P. oenanthum superbum (fig. 251), le plus beau 
peut-être de tous lés Cypripèdes hybrides. 


XLIII. HABITAT DES ZYGOPETALUM ET DES GENRES VOISINS. — 
Ce genre, tel qu’il est défini par Bentham, comprend une cinquan- 
taine d'espèces, répandues dans toute l'Amérique, depuis les 
régions tempérées du Brésil méridional jusqu’au Mexique méri- 
dional et aux Antilles. Beaucoup d’orchidologues, n'’admettent 
pas la réunion de genres proposée par Bentham; ils ont conservé 
les Huntleya, les Bollea, les Warscewiczella, les Kefersteinia, les 
Promenaea, les Pescatorea, les Zygosepelum, etc., ne regardant 
comme Zygopetalum que les Orchidées appartenant à la section 
des Euzygopetalum de Bentham, c'est à dire des Orchidées pleu- 
ranthes — convolutives, homoblastées, ayant un labelle avec 
callosité en fer à cheval, un plateau labellaire lisse ou velu, et 
un anthère sans prolongement. 

Le genre Zygopetalum croît dans les montagnes de la Guyane 
(Z.Burkei à 2,000 mètres) et du Brésil(Z.Mackayi(fig. 91 et 273), 
maxillare et xanthinum (fig. 278) la plus petite espèce du genre). 
On les y rencontre sur des rochers ou sur des troncs de Fougères, 
entre autres sur le Lomaria Boryana, au voisinage de cours d’eau 
et toujours dans des stations ombragées. Le Zygosehalum rostra- 
tum croît dans les mêmes conditions le long des rivières des 
Guyanes, Barabara, Demerara et Essequibo, dont les crues 
rapides, mais de courte durée, le recouvrent souvent. 

Le genre Huntleya est brésilien. Les deux espèces connues 
(H. Meleagris, Burtii) croissent dans l'ombre épaisse des bois 
avoisinant les rives du Rio de Pirapitinga, dans la province de 
Minas Geraës, au Costa-Rica, dans la Nouvelle Grenade, et dans 
l'Équateur. 

Les Pescatorea, les Bollea et les Warscewiczella croissent tous 
dans les profondeurs de la forêt vierge, sur des rochers, sur les 
troncs des arbres ou sur leurs branches les plus basses. Ces 
Orchidées redoutent l'éclat du soleil. Le dernier de ces genres à 
espèces très nombreuses, recherche les altitudes élevées : le 
Warscewiczella cerina habite les pentes du volcan de Chiriqui à 
2,800 mètres d’altitude; le W. cochlearis vit sur les hautes mon- 
tagnes courant entre les provinces brésiliennes de San Paolo et 


Minas Geraës ; le W. discolor croît sur le volcan de Carthago au 
Costa-Rica, les W. lamellosa, W.Lehmanni, W. Lindeni, W. mar- 
ginata de la Nouvelle Grenade, vivent dans des stations situées 
de 1,000 à 1,500 mètres, etc., etc. 

Les Promenaea (P. citrina, microptera, Rollisonii, stapelioides), 
atteignent des altitudes assez élevées au Brésil, dans la Chaîne 
des Orgues. 

Le Kefersteinia graminea souvent confondu avec les Zygope- 
talum ou les Promenea, croît à Mérida dans la Cordillère néogre- 
nadienne, à plus de 1,600 mètres d’altitude. 

Les Pescatorea (P. bella, carina, Klabochorum (fig. 175), 
Lehmanni, Russeliana, Wallisii, etc.) sont originaires des mêmes 
régions; ils sont fréquents surtout dans l'Équateur. Les altitudes 
de leurs stations sont élevées quoique ne dépassant guère 
1,500 mètres. 

Les Bollea se rencontrent à une altitude supérieure : le superbe 
B. caœlestis (fig. 186) croît à côté du Masdevallia Chimaera dans 
des stations situées à plus de 2,000 mètres de hauteur dans la 
Cordillère colombienne. 


XLIV. HABITAT DES SOPHRONITIS. — Les Orchidées monta- 
gnardes par excellence qui composent ce joli genre, habitent, 
presque toutes, les Orgues du Brésil (S. cernua, grandiflora et ses 
variétés, S. violacea, etc.), à une vingtaine de lieues de Rio de 
Janeiro. Barbosa Rodrigues a décrit deux espèces originaires de 
la province de Minas-Geraës et une espèce de la province del 
Espiritu-Santo. Elles se rencontrent à une altitude de 1,300 à 
1,700 mètres, dans des stations où le thermomètre en mai et juin 
tombe à zéro, tandis que pendant les mois les plus chauds, 
janvier et février, il s'élève à 29° C. Cette température élevée 
coïncide avec l’époque des pluies fréquentes. 


XLV. ZONE TROPICALE (Fin). — Si nous continuons notre 
voyage autour de l'Équateur thermique, nous retrouvons dans 
les îles du Pacifique, les genres asiatiques Tropidia et Vrydag- 
zynea. Dans les îles Phœnix et Christmas, elles forment le dernier 
anneau de cette ceinture orchidéenne que la nature a tressée 
autour de l’Équateur pour la plus grande joie de l’humanité. 


PL. XXVI. 


ANUM 


La zone équatoriale renferme, c'est une dernière remarque à 


CNT 


L\ 


Fig. 250. — Laelia purpurata Lor. 


faire, les formes les plus considérables d’Orchidées monopo- 
diales : il suffit de rappeler que les Séauropsis et les Grammato- 
phyllum sont originaires de la Malaisie, et que les Angraecum, les 
Eulophia, et les Lissochilus habitent l’Afrique équatoriale. 


XLVI. ZONE CHAUDE AUSTRALE. — Cette zone est limitée au 
nord par l’isotherme tropicale + 25°, au sud par l’isotherme 
+ 20° qui passe au nord des îles Norfolk, traversant le con- 
tinent australien aux environs du 30° lat. S., coupant l’Afrique 
au-dessus de Natal et de la Colonie du Cap, entrant en Amérique 
par le 3o° lat. S., puis remontant régulièrement jusqu’au 20° lat. 
S., pour redescendre ensuite au-dessous des îles de la Société 
et des îles Cook, des îles Fidji, des Nouvelles-Hébrides et de la 
Nouvelle-Calédonie. Dans cette zone, le continent australien et 
la grande île de Madagascar sont les centres orchidéens les plus 
importants. 

Orchidées néo-calédoniennes. — La Nouvelle-Calédonie, ce joyau 
des îles océaniennes, a une température moyenne de 25°. Elle 
renferme dix-huit genres et trente et une espèces; un genre 
endémique est monotype, l’Eriaxis Rchb. f. Si on compare la 
flore orchidéenne néo-calédonienne à celle des îles de la Poly- 
nésie française, huit genres sont communs à ces deux flores. 
La Nouvelle-Calédonie possède une espèce de moins et deux 
genres de plus que les îles polynésiennes; mais tandis que les 
Orchidées néo-calédoniennes sont toutes endémiques, sauf une, 
cinq espèces des îles polynésiennes françaises se retrouvent 
ailleurs. Ces Orchidées appartiennent aux genres Macrostylis, 
Liparis, Aeranthus, Caladema, Prasophyllum, Rhumphidia, Episte- 
phium(), Calanthe, Appendicula, Spathoglottis, Eria, Phreatia, 
Earina, Oberonia et Dendrobium (9). Toutes les espèces recueil- 
lies jusqu’aujourd’hui dans les possessions françaises, sont plus 
intéressantes au point de vue botanique que pour l'amateur. 


(x) Le genre Epistephium est essentiellement américain; toutefois REICHEN- 
BACH fils, dans ses Orchideae Roezlianae novae seu criticae (Fourn. Lin. Soc., 
t. 41, p. 15) admet, sur le témoignage de Vieillard, l'existence dans la Nouvelle- 
Calédonie de l’Epistephium smilacifolium. Il est vrai qu’il ajoute : Specimina 
observata valde manca ! 


Orchidées des îles de la Mélanésie. — Les îles Nouvelles-Hébri- 


= 
<> D 


Fig. 251. — Paphiopedium œnanthum superbum Rcas. 


des, Salomon, Nouvelle-Bretagne, Fidji, Archipel Bismark, etc., 


NT de 
perdues dans l’Océan Pacifique, se rattachent à la flore indienne 
par l’'exubérance de leur végétation. « La forêt envahit la plage, 
dit le Baron de Hubner, chaos de feuillage, de troncs et de 
branches tourmentés, de racines enchevêtrées.. On dirait des 
enroulements de serpents. » Dans ces îles océaniennes dont les 
noms évoquent des visions enchanteresses, M. Hemsley a relevé 
19 espèces d’'Orchidées à Tahiti, ro à l’île Chatham, 5 dans l’île 
de Norfolk, une aux îles Sandwich. M. Drake del Castillo a ren- 
contré dans les îles de l'Océan Pacifique, les genres suivants : 
Microstylis (3), Oberonia (2), Liparis (7), Dendrobium (1 2), Bulbo- 
phyllum (5), Cirrhopetalum (1), Chrysoglossum (1), Eria (9), 
Spathoglottis (1), Phajus (2), Earina (2), Agrostophyllum (1), 
Calanthe (7), Arundina (1), Sarcochilus (2), Saccolabium (2), Sar- 
canthus (1), Taeniophyllum (5), Appendicula (1), Corymbis (1), 
Tropidia (1), Vrydagzymia (2); Zeuxine (2), Odontochilus (2), 
Hetaeria (3), Moerenhoutia (3), Cryptostylis (1), Corysanthes (1), 
Pogonia (2), Leucorchis (1), Habenaria (6). 

Orchidées australiennes. — Le continent australien, ou du 
moins cette partie du continent australien située entre les lignes 
isothermiques de + 200 et + 25°, renferme des espèces apparte- 
nant aux Aeranthus, Bulbophyllum, Cirrhopetalum, Cymbidium, 
Diuris, Drakaea, Epiblema, Eriochilus, Galeola, Gastrodia, Geodo- 
vum, Glossodia, Hetaeria, Orthoceras, Prasophyllum, Pterostyllis, 
Schænorchis, Spathoglottis, Taeniophyllum, et Thelemytra. La plu- 
part des espèces sont endémiques; sur 250 espèces australiennes 
décrites, quatorze seulement n’appartiennent pas en propre à ce 
continent. Bien peu de ces espèces sont intéressantes. 

Orchidées des îles africaines. — Madagascar, ses satellites, 
(Sainte-Marie, Mayotte, etc.) et les îles Mascareignes (Réunion, 
Maurice, Rodrigue, Séchelles, Amirauté, Chagos, etc.), ces 
îles de l'Océan Indien aux promontoires lavés par la mer et 
baignés de perpétuels embruns, renferment un grand nombre 
d’Orchidées. « Terre de promission pour les naturalistes, » écrivait 
Commerson en 1771, « la nature semble s’y être retirée comme 
dans un sanctuaire particulier pour y travailler sur d’autres 
modèles que sur ceux auxquels elle est asservie ailleurs. Les 
formes les plus insolites, les plus merveilleuses s’y rencontrent 
à chaque pas. » Dans un seul district, celui d’Ankafana, les 


= 405 — 
botanistes ont rencontré en même temps que le Macroplectrum 
(Angraecum) sesquipedale (fig. 18), les Angraecum clavigerum, 
A.modestum, À.spathulatum, À .teretifolium, un fort bel Eulophia, 
les Polystachya anceps et virescens, et le Phajus Humblotii (fig. 252) 
rivalisant de beauté avec le Phajus Tankerville: (fig. 27). 

Les botanistes qui ont exploré ces belles îles, y ont relevé la 
présence de nombreux représentants des genres orchidéens sui- 
vants : Liparis (9), Bulbophyllum (14), Cirrhopetalum (1), Phajus 
(1), Calanthe (1), Eulophia (6), Lissochilus (2), Cymbidium (1), 
Grammatophyllum (2), Polystachya (3), Cyrtopodium (1), Aeran- 
thus (4), Angraecum(1) (28), Cryptopus (1), Œonia (4), Mystaci- 
dium (6), Corymbis (1), Cheirostylis (1), Gymnochilus (1), Arnottia 
(1), Holothrix (1), Bicornella (3), Habenaria (24), Cycnorchis (15), 
Satyrium (6), Disa (2), Brownlea (2), Platycoryne (1), Disperis 
(2). Cent quarante-cinq espèces réparties entre vingt-neuf genres 
différents, tel est le bilan orchidéen des îles Mascareignes. Si 
on tient compte de l’étendue de ces îles, on est frappé du nombre 
relativement élevé des espèces qu’elles renferment. 

La zone chaude australe américaine nous présente un nombre 
plus considérable d’Orchidées. La plupart des espèces sont, il 
est vrai, des irradiations de genres existant déjà dans la zone 
tropicale : ce sont des Amblostoma, Anguloa, Baskervilla, Coch- 
lioda, Comparettia, Cranichis, Paphiopedium, Diadenium, Diothonea, 
Epidendrum, Eriopsis, Gomphichis, Hofmeisterella, Lacaena, 
Laelia, Masdevallia, Microstylis, Milionia, Neodryas, Oncidium, 
Ponthieva, Pseudocentrum, Pterichis, Scelochilus, Sertifera, Sophro- 
nitis, Sutrina, Telipogon, Trichoceros, Warrea ei Zygopetalum. 
Les Baskervillea et Sutrina sont endémiques au Pérou. 

Le Pérou possède avec le Paraguay les Diadenium, avec la 
Colombie, les Diothonea, les Trichoceros et les Warrea, et avec la 
Bolivie, le Neodryas. Quelques genres (Elleanthus par ex.) 
donnent à la flore orchidéenne péruvienne leur cachet particulier. 


(1) Le savant orchidographe anglais Ridley, dans son excellente mono- 
graphie consacrée aux Orchidées de Madagascar (Yourn. Lin. Soc. t. 21, 
P. 456 et suiv.), sépare des Angrascum, les À. Gilpinae, exilis, aphylla et fhyo- 
sophora, et rétablit, pour elles et pour l'Angraecum abyssinien À. globulosum, 
la genre Gussonia de Richard. 


— 406 — 


Enfin, les îles de l’Océan Pacifique nous offrent quelques 
représentants de Hetaeria, Moerenhoutia et Shathoglottis, genres 
intéressants au seul point de vue géo-botanique. 


XLVII. ZONE TEMPÉRÉE AUSTRALE. — Située au sud de la 
région précédente et s'étendant jusqu’à la ligne isothère du r5e, 
cette zone comprend le sud du continent australien, la pointe 
méridionale du continent africain, une partie de l'Amérique 
méridionale. 

Orchidées américaines. — Dans cette zone, deux genres insigni- 
fiants Chloraea et Bipinnula sont les derniers représentants de 
cette famille si nombreuse dans les parties plus chaudes de 
l'Amérique. Elles sont insignifiantes au point de vue horticole. 
Ces genres ont leur centre de dispersion au Chili. Par leur abon- 
dance extrême (plus de 60 espèces), les CAlorea forment l’un des 
traits caractéristiques de la végétation chilienne. 

Les dernières Orchidées américaines que nous rencontrerons 
appartiendront à cette famille; la Patagonie nous offrira encore 
deux Orchidées : le Chloraea penicillata Rchb. f. et le C. magel- 
lanica Hook. f. Cette dernière Orchidée croît à la pointe australe 
du continent américain, près du détroit de Magellan. 

Orchidées africaines. — En Afrique, nous trouvons dans la zone 
tempérée australe une flore très riche, celle du Cap de Bonne 
Espérance et des territoires qui en dépendent (Cafrerie, Griqua- 
land). Vingt-neuf genres orchidéens la composent, si on admet 
les coupes génériques de Pfitzer : Acampe, Acrolophia, Angraecum, 
Bartholina, Bonatea, Brachycorythis, Brownleea, Ceratandra, Cory- 
cium, Disa, Disperis, Eulophia, Eulophidium, Forficaria, Habe- 
naria, Herschelia, Holothrix, Huttonaea, Lissochilus, Listrostachys, 
Monadenia, Mystacidium, Pachites, Polystachya, Pterygodium, 
Satyrium, Schizodium, Scopularia et Sienoglottis. Douze de ces 
genres sont endémiques à l'Afrique méridionale; deux autres y 
ont leur centre de dispersion : le Disa qui irradie vers Mada- 
gascar et l'Holothrix qui se retrouve en Abyssinie. Quatre autres 
genres : Ansellia, Herminium, Megaclinium et Platylepis, existent 
à Natal, mais ne se retrouvent pas dans cette partie de l'Afrique 
australe située au sud du Transvaal et du Natal à l’Est, et du 
Namaqualand à l'Ouest. 


AO 
Orchidées du Cap. — Des diverses parties de l'Afrique, la plus 


Fig. 252. — Phajus Humblotii Rens. f. 


étudiée et en même temps la plus intéressante pour l’orchido- 


— 408 — 


phile comme pour le botaniste, est toujours cette colonie du 
Cap, dont la végétation admirable se trouve, hélas ! aujourd’hui 
compromise par la destruction des forêts. Colons et indigènes, 
dans toute cette belle Afrique du sud, abattent les arbres pour 
satisfaire leurs moindres besoins, sans aucune préoccupation de 
l’avenir, avec une insouciance lamentable, se préparant à plaisir, 
à l'exemple de leurs aînés, les colons des États-Unis, des 
périodes de sécheresse qui ruineront leurs cultures. 

Le Cap forme à l’extrémité du continent africain un domaine 
distinct, bien connu, bien déterminé. Dans sa flore apparaissent 
des Éricacées, des Protéacées, des Térébinthacées, des Compo- 
sées, des Légumineuses, et de nombreuses plantes bulbeuses de 
types spéciaux. Cette flore est unique au monde par la multitude 
des espèces entremêlées et par la richesse et la variété de ses 
formes végétales. Plusieurs aires de végétation sont juxtaposées 
dans un étroit espace. On y a relevé 12,000 espèces parmi 
lesquelles plus de 2,000 Monocotylées à fleurs colorées. Dans ce 
total, les Orchidées(1) sont au nombre de 150. Cette admirable 
flore s’étage sur les flancs et sur le sommet de la montagne de la 
Table dont la masse imposante domine Cape-Town. Parmi les 
Bruyères arborescentes, plus de cinq cents Liliacées offrent au 
soleil leurs brillants périanthes à côté des Stapélies aux fleurs 
assombries, des Euphorbes charnues et de beaux arbustes aux 
reflets soyeux, argentés et bleuissants (Leucodendron argenteum). 

De tous les genres d’Orchidées habitant la Colonie du Cap, 
le plus remarquable est celui des Disa dont l'espèce la plus 
brillante est le Disa grandiflora L., « l'orgueil de la montagne de 
la Table ». C'est dans l'Afrique australe que croît également 
l’Orchidée bleue, l'Herschelia cælestis (D. graminifolia). 

Quand on cultive les Orchidées du Cap, il ne faut point perdre 
de vue que la période de repos de toute cette flore coïncide avec 


(1) Enumeratio Orchidearum quas in Africa australi extratropica colligerunt 
C. F. Ecklon Dr, et C. Zeyher, auctore G. Sonder, 1846. — Cf. les beaux tra- 
vaux de Harry Bolus indiqués plus haut (page 13), auxquels il faut ajouter : 
Icones Orchidearum austro-africanarum extra-tropicarum. Londres, 1894. 

(2) Les espèces de Disa se répartissent dans les sous-genres : Monadenia (7), 
Eudisa (12), Vexillata (5), Coryphaea (3), Schizodium (6), Orthocarpa (5), Vagi- 
naria (1), Herschelia (5), Oregura (1), Ampheyna (1). 


— 409 — 
le moment des grandes chaleurs. Pendant les sécheresses, de 
mars en mai, la végétation se repose, les feuilles tombent. Au 
moment où la pluie survient, alors même que la température est 
moins élevée, la plante se réveille, pousse ses feuilles et ouvre 
ses boutons. 

Orchidées australiennes de la zone douce australe. — Les îles 
australiennes — et nous y rattacherons la Nouvelle-Galles du 
Sud — comprises entre les isothermes 20° et 15° nous offrent 
un grand nombre d’Orchidées appartenant à des genres plus 
botaniques qu’horticoles. Tout récemment, Charles Moore (1) 
n’y a pas relevé moins de 174 espèces d'Orchidées, appartenant 
à 36 genres et réparties comme suit : Liparis (Sturmia) (2), 
Oberonia (2), Adenopetalum Fitzg. (1), Dendrobium (14), Bulbo- 
Phyllum (5), Sarcochilus (10), Taeniophyllum (1), Ornithochilus (1), 
Dipodium (1), Cymbidium (3), Phajus (1), Calanthe (1), Galeola 
(2), Epipogum (1), Gastrodia (1), Spiranthes (1), Thelymitra (10), 
Dinris (17), Orthoceras (1), Calochilus (3), Cryptostylis (3), Praso- 
bhyllum (23), Anticheirostylis Fitzg. (1), Microtis (2), Corysanthes 
(4), Pterostylis (26), Caleana (2), Drakaea (2), Acianthus (3), 
Cyrtostylis (1), Lyperanthus (4), Erischilus (1), Adenochilus (1), 
Caladenia (16), Chiloglottis (5), Glossodia (2). Le genre Caleana 
seul est endémique dans cette partie du monde. 


XLVIII. PATRIE DES Disa. — Le genre Disa, dont le centre 
de dispersion est évidemment l’Afrique australe et plus spécia- 
lement le Cap de Bonne-Espérance, se place au premier rang des 
Orchidées terricoles, par la rare magnificence de sa floraison, 
l'extrême vivacité comme la grande variété des coloris, emprun- 
tés aux plus belles nuances du rouge (Disa grandiflora), du 
pourpre (D. cornuta, D. racemosa, D. rufescens), du bleu (D. lon- 
gicornu, spathulata), du jaune (D. chrysostachya, D. patens, 
D. tenuifolia), du vert (D. cernua, D. frascinata), du blanc plus 
ou moins maculé de brun (D. melaleuca) ou de pourpre (D. cras- 
sicornis) et de bleu (D. Draconis, D. maculata), etc. Les grandes 


(1) Handbook of the Flora of New South Walis, par Charles Moore; Sydney, 
1893. Les Orchidées de cet ouvrage ont été revues par R. D. Fitzgerald, dont 
nous avons déjà signalé (p. 13) les remarquables travaux. 


27 


fleurs des Disa sont isolées ou groupées au nombre de deux 
ou de trois sur une hampe qui atteint o",60 et parfois un 
mètre de haut. « Dans la plupart des stations où on rencontre 
ces Orchidées, dit sir John Herschell, la température descend 
parfois à o° et monte jusqu’à 36° : elles sont garanties des 
rayons brûlants du soleil par un épais rideau d’arbustes dont les 
rameaux s'étendent au-dessus d’elles. A l’époque de la floraison, 
elles sont enveloppées bien souvent par d’épais brouillards 
accompagnés de vents froids qui persistent huit ou quinze jours 
sans interruption; puis vient la saison sèche, où perdant leurs 
tiges et leurs feuilles, elles müûrissent leur bulbe; puis arrive la 
saison des pluies et l’inondation. » 

Deux espèces sont surtout cultivées : le rare D. crassicornis 
aux racèmes pluriflores (8) dont les fleurs blanches maculées de 
pourpre foncé sont fort reconnaissables, et l’admirable D. gran- 
diflora dont les belles fleurs écarlates, souvent fort grandes, 
s'imposent à l'attention et à l’admiration des plus indifférents. 

Si le botaniste danois Schouw appelait la région du Cap le 
royaume des Stapélies et des Ficoïdes, l'orchidophile célébrerait 
plutôt en elle l'empire du Disa grandiflora. Sur le haut plateau 
de la montagne de la Table, à une élévation de plus de 1,000 
mètres, cette Orchidée aux fleurs brillantes vit, sur les bords 
de marais tourbeux, remplis par les pluies d'hiver, desséchés 
pendant la saison sèche. Végétant dans un sol complètement 
inondé, cette Orchidée fleurit pendant les mois de février et de 
mars, c’est-à-dire à l’entrée de la période automnale dans cette 
région. 

On trouve parfois sous le nom de D. Barelli ou D. grandiflora 
var. superba Moore, une variété de D. grandiflora à fleurs plus 
grandes, à hampe plus longue et plus florifère. Ses fleurs plus 
nombreuses sont écarlate cramoisi, veinées de carmin; elles sont 
plus grandes que celles de l'espèce type. 


XLIX. ZONE TEMPÉRÉE AUSTRALE. — Notre voyage dans 
cette zone sera bien rapide. Les terres australes sont rares dans 
cette région. Nous n’aurons à visiter que la Tasmanie (Terre 
van Diemen), les îles de la Nouvelle-Zélande, les petites îles 


Auckland et Campbell, limite australe du domaine orchidéen. 


Dans la Tasmanie un genre endémique est représenté par une 
espèce, le Burnettia. La Nouvelle-Zélande, d'après le relevé de 
Hooker, possède trente huit espèces appartenant aux genres : 
Earina, Bulbobhyllum, Dendrobium, Sarcochilus, Aeranthus, Cyr- 
tostylis, Adenochilus, Corysanthes, Microtis, Caladenia, Pterostylis, 
Chiloglottis, Lyperanthus, Thelymitra, Spiranthes, Prasophyllum, 
Orthoceras. Aucun de ces genres n’est propre à la Nouvelle- 
Zélande : tous ont des représentants dans les flores néo-calédo- 
nienne, australienne et asiatique. 


L. ConcLusion. — Les Orchidées sont, nous venons de le 
constater, répandues sur toute la surface du globe comprise entre 
les lignes isothermes + 5° : c'est moins l'intensité du froid que 
la trop grande brièveté de la période de temps accordée à la 
végétation, le manque d'humidité ou de chaleur survenant à la 
période du développement de la plante, qui limite tant en latitude 
qu’en altitude la vie de l’Orchidée. 

La croissance des Orchidées exige comme condition essen- 
tielle de son développement, une certaine humidité jointe à 
une température moyenne constante. De là vient la grande 
richesse des flores insulaires, tandis que dans les régions dénu- 
dées de l’Amérique, de l’Afrique et de la Chine, l'Orchidée 
disparaît. 

Étudiant l'étendue des habitats, on constate combien est petit 
le nombre des genres ayant une aire de dispersion un peu vaste; 
même dans ce cas, chaque espèce a sa zone isotherme particu- 
lière, toujours fort localisée; chaque espèce a un territoire bien 
déterminé où elle atteint le maximum de son développement; 
en dehors de cette région, elle diminue d’abondance et de 
vigueur. 

La beauté des fleurs est en raison directe de la lumière qu’elles 
reçoivent. Ainsi, les Orchis et les Ophrys européens sont pro- 
fondément modifiés dans leur aspect ou sont représentés par 
des formes généralement plus belles à mesure que leur station 
se rapproche de la zone méridionale plus chaude. Ainsi encore 
les plus admirables fleurs d'Orchidées nous viennent des îles de 
l'Archipel indien ou de ces continents déchiquetés et érodés par 
les mers voisines de l'Amérique tropicale; là se trouve la patrie 


— 412 — 


des Vanda, des Phalaenopsis, des Cattleya, des Laelia, des 
Odontoglossum, etc., etc. 

Plus que pour toute autre famille végétale, il faut tenir compte 
des changements physiques des stations où se rencontrent 
l'Orchidée. Le climat et l’altitude n’exercent pas seuls une 
action prépondérante sur la distribution des Orchidées. Il faut 
se préoccuper de l'existence, du voisinage et de la nature des 
autres végétaux, depuis l’humble mousse qui abrite les pseudo- 
bulbes des Orchidées terricoles boréales jusqu’aux arbres qui 
servent de support, d’abri ou d’écran aux Orchidées épiphytes 
tropicales. Il importe donc d'être fixé de la manière la plus 
précise possible sur l'habitat de chaque espèce. 

Nous terminerons cette étude en formulant le vœu de voir 
à l'avenir toute introduction d’Orchidée accompagnée de l’indi- 
cation exacte de son habitat et de la description des plantes 
qui l’avoisinent. Cette étude, il est vrai, sera parfois difficile. 
Dans les contrées tropicales, le plus souvent la graine de l’Or- 
chidée tombée à la bifurcation d’une branche, y trouve des 
racines de Fougères ou de Broméliacées en décomposition; sur 
celles-ci se sont amoncelés des feuilles et des rameaux, envahis 
par d'innombrables champignons, lichens et lycopodes qui 
détruisent les tissus et les approprient à la vie de l'Orchidée. 

Si, terminant ce rapide voyage autour du globe, nous dressons 
la statistique des richesses orchidéennes des divers continents, 
nous sommes amenés à placer en premier lieu la flore américaine 
comprenant 4130 espèces, soit plus de la moitié des espèces 
décrites. Après elle vient la flore indo-malaise qui nous offre 
2075 espèces, puis celles de l’Afrique et de l’Australie, enfin 
celle de l’Europe et de l'Asie septentrionale. La Flore orchi- 
déenne américaine se distingue encore par le grand nombre de 
genres endémiques (191) dont sept comprennent plus de cent 
espèces, Odontoglossum(108), Maxillaria(130), Masdevallia(130), 
Stelis(160), Oncidium(300), Pleurothallis (400), Epidendrum(500). 


INDEX SYNONYMIQUE 


DES 


PRINCIPALES ORCHIDÉES CULTIVÉES{(), 


Acacallis Ldl. v. Aganisia. Aeranthus Rchb. f. 
Acampe Ldl. —  arachnites Ldl. 
Acanthephippium Bl. —  fragrans Rchb. f. v. Angraecum 
—  javanicum BI. fragrans Thou. 
Acanthoglossum BI. v. Pholidota Ldl. —  grandiflorus Ldl. 
Aceras R. Br. —  Leonis Rchb. f. v. Angraecum 
—  anthropophora R. Br. Leonis Veitch. 
Achroanthes Raf. v. Microstylis Nutt. —  sesquipedalis Ldl. v. Macroplec- 
Acianthera Scheidw. v. Pleurothallis trum sesquipedale Pfitzer. 
KR. Br. Aerides Lour. 
Acineta Ldl. — affine Wall. v. A. multiflorum 
—  Barkeri Ldl. Roxb. 
—  chrysantha Ldl. v. A. superba — album Sand. v. A. quinquevul- 
Rchb. f. var. nerum Ldi. var. 
—  densa Ldi. —  ampullaceum Roxb. v. Saccola- 
—  glauca Lind. v. Cycnoches Pes- bium ampullaceum Ldl. 
catorei Ldl. —  arachnites Sw. v. Renanthera 
—  Hrubyana Rchb. f. Flos-aeris Rchb. f. 
—  Humboldtii Ldl. v. A. superba —  Augustianum Rolfe. 
Rchb. f. —  Ballantinsianum Rchb. f. v. A. 
—  superba Rchb. f. suavissimum Ld!. 
— — var. chrysantha Rchb. f. —  Brookei Bat. v. A. crispum 
— — — fulva Hort. Ldl. 
— — —  straminea Hort. —  calceolare Sm. v. Saccolabium 
—  Warscewiczit KI. v. A. densa calceolare Ldl. 
Ldi. —  cornuium Roxb. v. À, odoratum 
A clinia Griff, v. Dendrobium Sw. Lour. var. 
Acronia Prsl. v. Pleurothallis R. Br. —  crassifolium Rchb. f. 
Acropera Li. v. Gongora R. et P. —  crispum Ldi. 
—  Loddigesii v. Gongora galeata — — var. Lindleyanum Veitch. 
Rchb. f. — — —  Warneri Will. 
Ada Ldl. —  cylindricum Hook. v. A. Van- 
—  aurantiaca Ldi. darum Rchb. f. 
Adenoncos BI. v. Sarcochilus R. Br. —  Dayanum Hort. v. A. odoratam 
Adenostylis B1. v. Zeuxine Ldl. Lour. 


(1) Les noms imprimés en caractères romains doivent être conservés: ceux en 
italique sont les synonymes. Les hybrides sont inscrits dans la liste spéciale qui 
leur est consacrée. 

Nous avons cru inutile de donner le nom de toutes les Orchidées décrites : l’excel- 
lent Index Kewensis Plantarum Phanerogamarum, de Hooker et Jackson, (Oxford, 
1893), se trouve entre les mains de tous ceux qui s'occupent de phytotechnie et de 
phytonomie; MM. T. et E. Durand annoncent la publication prochaine d'un Census 
orchidearum ou Relevé des Orchidées du monde entier avec notes bibliographiques 
et iconographiques, ouvrage considérable qui donnera le tableau, aussi complet que 
possible à l'heure actuelle, des formes si complexes de la famille orchidéenne. 


28 


Aerides Ellisii Hort. v. A. virens Ldl. 


var 


— elongatum BI. v. Renanthera 


elongata Lour. 
Emericii Rchb. f. 
expansum Rchb. f. 
— var. Leoniae Rchb. f. 
falcatum Ldi. 
— var. Houlletianum v. A. 
Houlletianum Rchb. f. 
Leoniae Veitch v. A. 
expansum Rchb. f.v. 
—  —  Mendelii Hort. 
Fenzlianum Rchb. f. v. A. quin- 
quevulnerum Ldl. 
Fieldingii Lodd. 
— var, hybridum Hort. v. A. 


X Dominyanum Veitch. 


Williamsii Veitch. 

flavidum Ldi. v. A. suavissimum 
Ldl. 

Godefroyanum Rchb. f. v. À. 
multiflorum Roxb. var. 

guttatum Roxb. v. Rhynchosty- 
lis retusa BI. var. guttata. 

Houlletianum Rchb. f. 

Huttoni Hort. v. A. Thibautia- 
num Rchb. f. 

illustre Rchb. f. 

japonicum Lind. et Rchb. f. 

jucundum Rchb. f. v. À. quin- 
quevulnerum Ldl. 

Lavpentae Hort. v. A. falcatum 
Ed: 

Lawrenciae Rchb. f. 

Leeanum Rchb. f. 

Leoniae Godefr. v. À. expansum 
Rchb. f. var. 

lepidum Rchb. f. 

Lindleyanum Wight v. A. cris- 
pum Ldl. var. 

Lobbii Lind. v. A. multiflorum 
Roxb. var. 

maculosum Ldl. 

— var. formosum Lind. et Rodig. 

margaritaceum Hort. 

Schrœæderi Henfr. 

Mac Morlandi Hort. 

margaritaceum Hort. v. À. ma- 
culosum Ldi. var. 

marginatum Rchb. f. v.A. quin- 
quevulnerum Ldl. var. 

matutinum Bl. v. Renanthera 
matutina Ldl. 

Mendelii Hort.v.A. falcatum Ldi. 
var. 

mitratum Rchb. f. 

multiflorum Roxb. 

— var. Ainsworthii Will. 

Godefroyanum Veitch. 

Lobbii Wiil. 

superbum Moore. 


—  — 


— _ — 


Aerides multiflorum var. Veitchii Ed. 


— 


Mort. 
nobile Warn. v. À. suavissimum 
Ed 
odoratum Lour. 
— var, birmanicum Rchb. f. 
cornutum Hort. 
Demidoffi Lind. 
majus Hort. 
purpurascens Hort. 
pachyphyllum Rchb. f. 
Picotianum Hort. v. À. Houlle- 
tianum Rchb. f. 
platychilum Rolfe. 
praemorsum Willd. v. Rhyncho- 
stylis retusa BI. 
quinquevulnerum Ldl. 
— var. Farmeri Hort. Will. 
marginatum Rchb. f, 
Schadenbergianum 
Stein. 
violaceum Hort. 
radicosum A. Rich. 
Reichenbachii Lind. 

— var. cochinchinenses Hort. 
vetusum Sw. v. Rhynchostylis 
retusa B1. var. guttata Ldl. 

Roebelinii Rchb. f. 

Rohanianum Rchb. f. v. A. sua- 
vissimum Ldl. 

roseum Paxt. v. À. multiflorum 
Roxb. 

yostratum Roxb. 
rostrata Rchb. f, 

yubrum Hort. v. À. radicosum 
Rich. 

Savageanum Hort. Sand. 

Schrocderi Hort. v. À. maculo- 
sum Ldi. var. 

suavissimum Ldl. 

— var. Ballantinianum Hook.f, 

maculatum Will. 

testaceum Ldl. v. Vanda parvi- 
flora Ldl. 

Thibautianum Rchb. f. 

Thunbergii Miq. v. Angraecum 
falcatum Ldi. 

trigonum KI. v. A. multiflorum 
Roxb. 

Vandarum Rchb. f. 

Veitchii De Puydt. v. A. multi- 
florum Roxb. var. 

violaceum Hort. v. A. quinque- 
vulnerum Ldi. var. 

virens Ldl. 

— var. Dayanum Hort. 

Ellisii Will. 

grandiflorum Hort. 

superbum Hort. 

Warneri Will. v. A. crispum 
Ldi. var. 


v. Camarotis 


Aerides Wightianum Ladl. v. Vanda 
parviflora Ldl. 
—  Williamsii Warn. v. A. Fiel- 
dingii Lodd. var. 
Aerobium Sprg. v. Angraecum Thou. 
Aganisia Ldl. 

—  coerulea Rchb, f, 

—  cyanea Benth, 

—  ionoptera Nichols,. 

—  lepida Lind. et Rchb. f. 

—  pulchella Ldl. 

—  tricolor N. E. Br. 
Agrostophyllum Khasianum Griff, 
Alamania Llav. et Lex. v. Epiden- 

drum L. 
Alipsa Hoffm. v. Liparis L. C. Rich. 
Alvisia Ldi. v. Eria Ldi. 
Amalias Hoffm. v. Laelia Ldl. 
Amblyglottis B1. v. Calanthe R. Br. 
Amphyglottis Salisb. v. Epidendrum L. 
Anacamptis L. C. Rich. 

—  pyramidalis L, C. Rich. 
Anacheilum Hoffg. v. Epidendrum L. 
Anathallis Barb. Rodr. v. Pleurothallis 

KR. Br. 
Angraecum Thou. 
—  aäpiculatum Hook. v. À. bilobum 
Ladl, 
—  arcuatutn Ldl. v. Listrostachys 
arcuata Rchb. f. 

—  armentiacum Ldl. v. A. ebur- 

neum Thou. 

—  articulatum Rchb, f. 

—  bilobum Ldl. 

— — var. Kirkii Rchb. f. 

—  Brongniartianum Rchb. f. v. A. 

eburneum Thou. 

—  caudatum Ldl. v. Listrostachys 

caudata Rchb. f. 

—  Chaïlluanum Hook. f. 

— — var. crenatum Rchb. f. 

—  citratum Thou. 

—  crenatum Rchb, f. v. A. Chaïllua- 

num Hook. f. 
—  cryptodon Rchb. f. 
—  descendens Rchb. f. v. A. articu- 
latum Rchb. f. 
—  eburneum Thou. 
— — var. superbum Hort, 
— — —  virens Hook. 
—  Eichleriarnum Kränzl. 
—  Ellisii Rchb. f. 
—  falcatum Ldl. 
—  fastuosum Rchb. f, 
—  fragrans Thou. 
—  fuscatum Rchb. f. 
—  Germinyanum Hook. f. 


Grantii Batem. v. A. Kotschyi 


Rchb. f. 
—  Hildebrandtii Rchb. f. 
— hyaloides Rchb. f. 
—  Kotschyi Rchb. f, 


Angraecum Leonis Veitch. 
—  maculatum Ldl. v. Eulophidium 
maculatum Pftz. 
—  modestum Hook, f, 
— monophyllum A. Rich. v. Eulo- 
phidium maculatum Pfitz. 
—  pellucidum Läl. v. Listrostachys 
pellucida Rchb. f. 
—  pertusum Ldl. v. Listrostachys 
pertusa Rchb. f. 
—  Sanderianum Rchb. f. v. A. mo- 
destum Hook. f. 
—  Scottianum Rchb. f. 
—  Sedenti L. Lind. et Rodig. v. Li- 
strostrachys Sedeni Rchb. f. 
—  sesquipedale Thou. v. Macro- 
plectrum sesquipedale Pfitz. 
—  superbum Thou. v. A. eburneum 
Thou. var. 
— terrestre Rumph. v. Phajus am- 
boinensis B]. 
—  virens Ldl. v. A.eburneum Thou. 
Var. 
Anguloa R. et Pav. 
—  Clowesii Ldl. 
— — var. flava Bot. Mag. 
— — —  macrantha Hort. 
— — — umiÿflora Hort. v. A. 
dubia Rchb. f. 
—  dubia Rchb. f. 
—  eburnea Will. v. A. uniflora var. 
— _ grandiflora R. et P. v. Stanhopea 
grandiflora Ldl. 
—  Hernandezii Kunth v. Stanhopea 
tigrina Bat. 
—  Hohenlohii Morr. v. A. Ruckeri 
Ldl. var. sanguinea Ldl. 
—  intermedia Rolfe v. À. X media 
Rchb. f. 
— media Rchb. f. 
—  purpurea Hort. v. A. Ruckeri 
var. sanguinea Ldi. 
Ruckeri Ldl. 
— — var. retusa Rchb. f, 
— — —  sanguinea Ldi. 
—  superba H. B. v. Acineta superba 
Rchb. f. 
—  Turneri Hort. v. À, uniflora KR. 
et P. var. 
—  uniflora R. et P. 
— — var. eburnea Hort. 
— — — Treyerani Rolfe. 
— — —  Turneri Hort. 
— — — virginalis Lind. 
—  viyginalis Lind. v. A. uniflora 
R. et P. var. 
Ania Ldi. var. Tainia BI. 
Anisopetalum Hook. v. Bulbophyllum 
Thou. 
Anœctochilus Bl. 
—  argenteus Ldl. v. Physurus ar- 
genteus Loud. 


Anœctochilus ærgenteus var. pictus v. 

Physurus pictus Ldl. 

—  argyroneurus C.Koch et Bouché. 

—  Boylei Hort. Will. v. À, regalis 
BI, var. 

—  Bullenii Low. 

—  concinnus Hort. 

—  çordatus Hort. v. A. regalis BI. 
var. 

—  Dawsoni Hort. v. Haemaria dis- 
color Ldi. var. Dawsoni. 

—  Dayi Hort. v. Dossinia marmo- 
rata Ch. Morr. var. 

—  discolor Bl. v. Haemaria disco- 
lor Lal. 

— Eldorado Hort. 

—  Friderici-Augusti Rchb. f. 

—  grandifolius Hort. v. A. regalis 
BI. var. 

—  Heriotii Hort. Will. 

—  hieroglyphicus Hort. 

—  inornatus Moore v. À. regalis 
BI. var. 

—  inscriptus Hort. 

—  intermedius Hort. 

—  javanicus Hort. v. Argyrorchis 
javanica BI. 

—  Lansbergiae Lind. 

—  Jatimaculatus Hort. 

—  lJineatus BI. v. Zeuxine regium 
Ldl. 

—  Lobbianus Planch. v. A. Rox- 
burghii Ldl. 

—  Lobbii Hort. v. À. argyroneurus 
C. Koch et Bouché. 

—  Lowit Bl. v. Dossinia marmo- 
rata Ch. Morr. 

—  Macodes Hort. v. Macodes Pe- 
tola BI. 

— marmoratus Hort. v. Dossinia 
marmorata Ch. Morr. 

—  Nevillianus Hort. 

—  nobilis Hort. v. Physurus nobilis 
Rchb. f. 

—  Ordianus Hort.v. Haemaria dis- 
color Ldl. var. 

—  Ortgiesii Hort. v. Physurus Ort- 
giesii Rchb. f. 

—  PetolaHort.v.Macodes PetolaBl. 

—  pulcher Hort. v. Nephelaphyllum 
pulchrum BI. 

—  querceticola Hort. v. Physurus 
querceticola Ldl. 

—  regalis BI. 

— — var. Boylei Hort. 

— — —  cordatus Hort. 

— — — grandifolius Hort. 

— —  —  inornatus Hort. 

—  regius v. Zeuxine regia Ldi. 

—  Reinwardtii BI. 

—  Rollhisonii Lind, v. Haemaria 
Rollisonii Hort. 


Anœctochilus Roxburghii Ldl. 
—  — var. setaceo-pictus Hort. 
—  Ruckeri Hort. 
—  setaceo-pictus Hort. v. À. Rox- 
burghii Ldl. var. 
—  setaceus BI. 
— —  var.Hort.v.A.regalis Bl.var. 
—  striatus BI. v.Zeuxine regia Ldi. 
—  Turneri Hort. 
—  Veitchit Hort. v. Macodes Pe- 
tola BI. 
—  xanthophyllum Hort. v. A. Fri- 
derici-Augusti Rchb. f. 
—  zebrinus Hort. 
Ansellia Ldl. 
—  africana Ldl. 
— — var. lutea Rech. 
gigantea Rchb. f. 
— — — natalensis Hook.-v.A, 
gigantea Rchb. f. 
—confusa NE: Br. 
—  congoensis Lind. 
—  gigantea Rchb. f. 
— aniloticaN. E. Br. 
Anthericlis Raf. v. Tipularia Nutt. 
Aplectrum Nutt. 
—  hiemale Nutt. 
Avachnanthe BI. v. Renanthera Lour. 
—  Cathcarthii Benth.v. Esmeralda 
Cathcarthiüi Rchb. f, 
—  Clarkei Rolfe v. Esmeralda 
Clarkei Rchb. f. 
—  Lowit Benth. v. Renanthera 
Lowii Rchb. f. 
—  moschifera BI. v. Renanthera 
Flos-aeris Rchb. f. 
Ayvachnis BI. v. Renanthera Lour. 
Avachnites F. W. Schm. v. Ophrys L. 
Arethusa L. 
—  bulbosa L. 
—  plicata Andr. v. Pogonia plicata. 
Argyrorchis BI. 
—  javanica BI. 
Armodorum Kuhl. et Hass. v. Renan- 
thera Lour. 
Arpophyllum Llav. et Lex. 
—  cardinale Lind. et Rchb. f. 
—  giganteum Hartw. 
—  spicatum LI. et Lex. 
Avrhynchium Ldl. v. 
Lour. 
Arthrochilum palustre Irm. v. Epi- 
pactis palustris Crtz. 
Arundina BI. 
—  bambusaefolia Ldi, 
—  densa Ldl. 
Aspasia Ldl. 
= lunata Ldi. 
— — var. superba Hort. 
Ate Lal. v. Habenaria Willd. 
Auliza Salisb. v. Epidendrum L. 
Barkeria Kn. et W. v. Epidendrum L. 


Renanthera 


RE 


Barkeria Barkeriola Rchb. f. v. Epiden- 


drum Barkeriola Ldl. 
cyclotella Rchb. f. v. Epidendrum 
cyclotellum Rchb. f. 
elegans Kn. et W. v. Epiden- 
drum elegans Rchb. f. 
Lindleyana Kn. et W. v. Epi- 
dendrum Lindleyanum Bat. 
melanocaulon Rich. et Gal. v. 
Epidendrum Skinneri Bat. 
spectabilis Bat. v. Epidendrum 
spectabile Rchb. f. 


Barlia Parl. v. Aceras R. Br. 
Batemania Ldl. 


Beaumontii Rchb.f. v.Galeottia 


Beaumontii Rich. 

Burtii Endr. et Rchb.f. v. Hunt- 
leya Burtii Bat. 

Colleyi Ldl. 

fimbriata Rchb. f. v. Galeottia 
fimbriata Ldl. 

grandiflora Rchb. f. v. Galeottia 

grandiflora Rich. 

Meleagris Rchb. f. v. Huntleya 
Meleagris Ldl. 

Wallisii Rchb. f. v. Huntleya 
Burtii Endr. et Rchb. f. var. 
Wallisii. 


Benthamia À. Rich. v. Platanthera L. 
C. Rich. 
Bifrenaria Ldl. 


atropurpurea Ldl. 

aurantiaca Ladl. 

citrina Hott. v. B. Harrisoniæ 
Ldl. var. citrina Hort. 

Hadwenii Ldi. v. Scuticaria 
Hadwenii Benth. 

Harrisoniae Ldl. 

— var. alba Hort. 

citrina Hort. 

eburnea Hort. 

vitellina Ldl. 

inodora Ldl. 

racemosa Ldi. 

vitellina Lal. 

Wageneri Rchb. f. 


Bilabrella Ldl. v. Habenaria Willd. 
Birchea À. Rich. v. Luisia Gaud, 
Bletia R. Br. 


acutipetala Hook. 

alba Hort. v. Bletilla hyacin- 
thina Rchb. f. var. alba. 

albida Rchb. f. v. Laelia albida 
Ldl. 

anceps Rchb. f. v. Laelia anceps 
Ladl. 

autumnalis Rchb. f. v. Laelia 
autumpalis Ldl. 

bambusaefolia R. Br. v. Arun- 
dina bambusaefolia Ldl. 

bicolor Rchb. f. v. Leptotes bico- 
lor Ldi. 


Bletia Boothiana Rchb. f. v. Laelia 


lobata Ldl. 

campanulata LI. 

cinnabarina Rchb. f. v. Laelia 
cinnabarina Ldl, 

crispa Rchb. f. v. Laelia crispa 
Ldl. 

Digbyana Rchb. f. v. Laelia 
Digbyana Benth et Hook. 

domingensis Rchb. f. v. Laelia 
domingensis Ldl. 

elegans Rchb. f. v. Laelia ele- 
gans Rchb. f. 

furfuracea Rchb. f. v. Laelia fur- 
furacea Ldl. 

Gebinae Ldl. 

glauca Rchb. f. v. Laelia glauca 
Benth. et Hook. 

grandiflora Llav.et Lex. v. Lae- 
lia majalis Ldl. 

grandis Rchb. f. v. Laelia gran- 
dis Ldl. 
Humboldtii Rchb. f. v. Schom- 
burgkia Humboldtii Rchb. f. 
hyacinthina R. Br. v. Bletilla 
hyacinthina Rchb. f. 

japonica Hort. v. Bletilla hya- 
cinthina Rchb. f. 

Lindleyana Rchb. f. v. Laelia 
Lindleyana Hook. 

LyonsiiRchb.f. v. Schomburgkia 
Lyonsii Ldi. 

Masuca Don. v. Calanthe Ma- 
suca Ldi. 

patula Hook. 

Perrinii Rchb. f. v. Laelia Per- 
rinii Ldi. 

præstans Rchb. f. v. Laelia pu- 
mila Rchb. f. var. 

pumila Rchb. f. v. Laelia pu- 
mila Rchb. f. 

purpurata Rchb. f. v. Laelia pur- 
purata Ldi. 

rubescens Rchb.rf. v. Laelia ru- 
bescens Ldl. 

Shepherdii Hook. 

Sherrattiana Bat. 

speciosa H. B. K. v. Laelia maja- 
lis Ldl. 

superbiens Rchb. f. v. Laelia 
superbiens Ldl. 

Tankervilleae R. Br. v. Phajus 
Tankerville:e BI. 

Tibicinis Rchb. f. v. Schom- 
burgkia Tibicinis Bat. 

tuberculosa Spreng. v. Phajus 
tuberculosus B1. 

undulata Rchb. f.v. Schomburg- 
kia undulata Ldl. 

verecunda R. Br. 

Woodfordii BI. v. Phajus macu- 
latus Ldl, 


— 418 — 


Bletia xanthina Rchb. f. v. Laelia 
xanthina Ldi, 

Bletilla Rchb. f. 

— hyacinthina Rchb. f. 

— — var. alba Hort. 
Bollea Rchb. f. 

—  cœlestis Rchb. f. 

—  Lalindei Rchb. f. 

—  Lawrenceana Rchb. f. 

—  Patinii Rchb. f. 

—  pulvinaris Rchb. f. 

—  violacea Rchb. f. 
Bonatea W. v. Habenaria Willd. 
Bothriochilus Lem. v. Cœlia Ldl. 
Brassavola R. Br. 

= acaulis LG: 

—  cordata Ldi. 

—  cucullata Ldl. 

—  cuspidata Hook. 

—  Digbyana Ldi. v. Laelia Dig- 

byana Bath. 


—  Gibbsiana Will. v. B. cordata Ldi. 


—  glauca Li. v. Laelia glauca Ldi. 

—  lineata Hook. 

—  Mathieuana KI. v. B. lineata 
Hook. 

—  Perrinii Ldl. v. B cordata Ldl. 

—  Pescatorei Hort. v. Epidendrum 
falcatum Ldl. 

—  tuberculata Hook. 

—  yenosa Ldil. v. B. cordata Ldi. 

Brassia Ldi, 

—  antherotes Rchb. f. 

—  aristata Ladl. v.B. verrucosa Ldl. 

—  bicolor Rolfe. 

— brachiata Ldi. 

—  caudata Ldi. 

— — var. hieroglyphica Rchb, f. 

—  cinnamomea Lind. v. B. Keiliana 
Rchb. f. 

—  cochleata Kn. et W. v. B. Law- 
renceana Ldl. var. angusta. 

—  coryandra Morr. v. B. verrucosa 
Ldl. 

—  Cowani Hort. v. B. verrucosa 
Lal. 

—  Gireoudiana Rchb. f. et Warsc, 

—  gultata Ldl. v. B. maculata KR. 
Br: var. 

—  Keïiliana Rchb. f. 

—  Lanceana Ldi. 

—  — var. macrostachya Ldi. 

— — — pumila Veitch. 

—  Lawrenceana Ldi. 

— — var. angusta Ldi. 

— — — Jongissima Rchb. f. 

—  longiloba À. DC, v. B. verrucosa 
Ldi. 

—  macrostachya Ldl. v. B. Lan- 
ceana Ldi. var. 

—  maculata R. Br. 

— — var. guttata Ldi. 


Brassia maculata var. major Hort. 
—  odontoglossoides KI. v. B. verru- 
cosa Ldl. 
—  signata Rchb. f. 
—  verrucosa Ldl. 
— — var. grandiflora Will. 
—  yviridis Hort. v.B. verrucosa Ldl. 
—  Wyayae Hook, v. B. maculata 
Ldl. var. guttata. 
Bromheadia Ldl. 
—  palustris Ldl. 
Broughtonia coccinea Hook. v. Epi- 
dendrum sanguineum Sw. 
—  linearis Wall. v. Cœlogyne fim- 
briata Ldl. 
— sanguinea R. Br. v. Epiden- 
drum sanguineum Sw. 
Bryobium Ldl. v. Eria Ldl. 
Bulbophyllum Thou. 
—  adenopetalum Ladl. 
—  alopecurum Rchb. f 
—  amplebracteatum Teysm, 
—  anceps Rolfe. 
—  angustifolium Ldi. 
—  aurantiacum F. Muell. 
— auricomum Ldi. 
—  balaeniceps Rchb. f. v. B. Na- 
pelli Ldi. 
—  barbigerum Ldl. 
—  Beccarii Rchb. f. 
—  Berenicis Rchb. f. 
—  biflorum Teysm. et Binn. 
—  bracteolatum Ldl. 
—  Bufo Rchb. f. v. Megaclinium 
Bufo Ldl. 
—  caespitosum Thou. 
—  calamarium Ldl. 
—  capillipes Par. et Rchb. f. 
—  capitatum Ldl. 
—  Careyanum Spr. 
—  cernuum Ldl. 
—  Cheiri Ldl. 
—  chloroglossum Rchb. f. 
—  ciliatum Ldl. 
—  clandestinum Ldi. 
—  cocoinum Bat. 
—  compressum Teysm. et Binn. 
—  croceum Ldl. 
—  cupreum Ldl. 
—  Dayanum Rchb. f, 
—  Dearei Rchb. f. 
—  flavescens Ldl. 
—  flavidum Ldl. 
—  fusco-purpureum KR. Wight. 
—  fuscum Ldi. 
—  gibbosum Ldi. 
—  gracile Thou. 
—  grandiflorum BI. 
—  herminiostachys Rchb. f. 
—  Henshallii Hort, v. B. Lobbii 
Ldl. var. 
—  hirtum Ladl. 


Bulborchis Zoll. v. Pleione Don. 
Burlingtonia Ldl. v. Rodriguezia R. 


Calanthe Barberiana Rchb. f. v. Prep- 


Bulbophyllum imbricatum Ldl. 


inaequale Rchb. f. 

iners Rchb. f. 

inops Rchb. f. 
javanicum BI. 
Khasianum Gri£. 
lasianthum De Vr. 
lemniscatum Par. 
leopardinum Ldi. 
limbatum Ldl. 

Lobbii Ldl. 

—  siamense Rchb. f. 
macranthum Ldl. 
Medusae Rchb. f. 
membranaceum Teysm. et Binn. 
minutissimum F. Muell. 
mucronatum Ldl, 
Napelli Ldl. 

nasatum Rchb. f. 
nilgherrense Wight. 
obtusum Ldi. 

oculatum Teysm. et Binn. 
Odoardi Rchb. f. et Pfitz. 
odoratum Ldl. 
oligoglossnm Rchb. f. 
paleaceum Benth. 
parvulum Ldi. 
pavimentatum Ldl. 
pileatum Ldl. 

Pipio Rchb. f. 
psittacoglossum Rchb. f. 
Psychoon Rchb. f,. 
recurvum Ldi. 
reticulatum Bat. 
Rhizophorae Ldi. 


 rigens Rchb. f. 


rufinum Rchb. f. 
saltatorium Ldl. 
setigerum Ldl. | 
Shepherdi F. Muell. | 
stamense Rchb. f. v. B. Lobbii 
Ldi. var. 

sordidum Ldl. | 
sulcatum Ldl. 

tenellum Ldl]. 
tenuifolium Ldi. 
tetragonum Ldl. 

triste Rchb. f. 
umbellatum Ldl. 
vittatum Teysm. et Binn. 


EE 

amæna Hook. v. Rodriguezia 
decora Rchb. f. 

Batemanni Hort. v. Rodriguezia 
candida Rchb. f. 

Knowlesii Hort. v. Rodriguezia 
venusta Rchb. f. 


Calanthe R. Br. 


australis Hort. v. C. veratrifolia 
HR br 


tanthe Regnieri var. nivalis. 

bicolor Ldl. v. C. striata R. Br. 

brevicornu Ldi. 

burfordensis Hort. v.C. X Sand- 
hurstiana G. et Rchb. f. 

casta Hort. v. Preptanthe Re- 
gaieri var. nivalis. 

colorans Rchb. f. v. C. veratri- 
folia R. Br. var. 

comosz Rchb. f. v.C. veratrifolia 
R. Br. 

Cooksont Hort. v. C. Veitchii 
Ldl. var. alba Hort, 

curculigoides Wall. 

emarginata Wight v. C. Masuca 
Lal. 

fausta Hort. v. Preptanthe Re- 
gnieri Rchb. f, var. 

furcata Bat. 

Gebinae Lodd. v. Bletia Gebinae 
Ldl. 

Febine Sieb. vid. Bletia Gebinae 
Ldl. 

labrosa Rchb. f. v. Calanthidium 
labrosum Pftz. 

Masuca Lal. 

— var. grandiflora Will. 

natalensis Rchb. f. 

Petri Rchb. f. v. C. veratrifolia 
R. Br. 

pleiochroma Rchb. f. v. C. nata- 
lensis Rchb. f. 

pulchra Ldl. v. C. curculigoides 
Ldl. 

Regnieri Rchb. f. v. Preptanthe 
Regnieri Rchb. f. 

rosea Benth. v. Limatodes rosea 
Ldl. 

Sanderiana Hort. v. Preptanthe 
Regnieri Rchb. f. var. 

Sieboldii Desne, v.C.striata R.Br. 

Stevensit Hort. v. Preptanthe 
Regnieri Rchb. f. var. 

striata R. Br. 

sylvatica Hemsl. v.C. natalensis 
Rchb. f. 

Textorii Miq. v. C. veratrifolia 
R. Br. var. 

tricarinata Ldi. 

Turneri Rchb. f. v, Preptanthe 
Regnieri Rchb. f. 

veratrifolia R. Br. 

— var. colorans Rchb. f. 

macroloba Rchb. f. 

Regnieri Rchb. f. 

Textorii Miq. 

vestita Wall. v. Preptanthe 
vestita Rchb. f. 

Williamsii Moore v. Preptanthe 
Williamsii Rchb. f. 


Calanthidium Pftz. 


Calanthidium labrosum Pfitz, 
Calypso Salisb. 


borealis Salisb. 


Camaridium Ldl. 


ochroleucum Ldi. 


Camarotis Ldi. 


rostrata Rchb. f. 


Catasetum L. C. Rich. 


abruptum Hook, 

atratum Ldl. 

barbatum Ldl, 

— var. speciosum Rolfe. 

buccinator Hort. v. Mormodes 
buccinator Ldl. 

Bungerothii N. E. Br. 

var. allreum Il. lLind. et 
Rodig. 

Pottsianum L. Lind. et 
Rodig. 

cernuum Rchb. f. 

Chrystianum Rchb. f. 

citrinum v. Mormodes pardinum 
Bat. var. unicolor Hook. 

decipiens Rchb. f. 

Finetianum L. Lind. et Cogn. 

galeritum Rchb, f. 

globiflorum Hook. 

Imschootianum L. Lind, et Cogn. 

Lehmanni Rgl. 

lineatum Ldl. v. 
lineatum Hort. 

macrocarpum Rich. 

— var. chrysanthum L. Lind. 

et Rodig. 

pulchrum N. E. Br. 

Rodigasianum Rolfe. 

saccatum Ldi. 

Scurra Rchb. f. 

tabulare Ldl. 

— var. brachyglossum Rchb. f, 

laeve Rchb. f. 

rhinophora Rchb. f. 

serrulata Rchb. f, 

virens Rchb. f. 

tigrinum Rchb. f. 

tridentatum Hook. v. C. macro- 
carpum Rich. 

trifidum Hook. v. C. cernuum 
Rchb. f. 


Mormodes 


Cattleya Ldl. 


Aclandiae Ldl. 

var. Salmonia HOrt. 

Schilleriana Rchb.f. v. 

C.Schilleriana Rchb. f. 

Alexandrae Lind. et Rolfe. 

— var. elegans Rolfe. 

tenebrosa Rolfe. 

amabilis Hort. v. C. intermedia 
Grah. 

Amaliæ Lind. v. C. Schilleriana 

Amesiana Hort. v. Laeliocatt- 
leya Amesiana Rolfe. 


| Cattleya amethystina Lem. v. C. inter- 


media Grah. 
amethystoglossa Lind. et Rchb. f. 
— var. rosea Rolfe. 

Hort. angl. v. C. guttata 
var. Prinzii Rchb. f. 
Arenbergii Scheidw.v. C. Harri- 

soniae Ldl. 
Augustae-Victoriae Sand. v. C. 

labiata Ldl. var. Warscewiczii 

Rchb. f. 
auvea Lind. v. C. labiata Ldl. 

var. Dowiana Bat. 
autumnalis Hort. v. C. Bow- 

ringiana Rchb. f. 

Backhousii Rchb. f. v. C. ma- 

xima Ldi. 

Bassettii Hort. v. C. labiata Ldl. 

var. Luddemanniana Rchb. f. 
bella Hort. v. Laeliocattleya 
bella Rolfe. 

RChb EF v: Cabas Ed 
var. Mendelii Rchb. f, 
bicolor Ldi. 

— var. punctata Hort. 
Blenheimensis Hort. v. Laelio- 
cattleya elegans Rolfe, var. 
Bluntii Hort. v. C. labiata Ldl. 

var. Mendelii. 
bogotensis Hort. v. C. labiata 

Ldl. var. Trianaei Rchb. f. 
Boissieri Hort. v.C. labiata Ldl. 

v. Trianae Rchb. f. 

Bonniana Hort. v. C. labiata 

Ldi. v. Trianae Rchb. f. 
Boothiana Ldi. v. Laelia lobata 

Rchb. f. 

Bowringiana Veitch. 
Brysiana Lem. v. Laelia purpu- 

rata Ldl. 

Buchaniana Hort. v. C. labiata 
v. Luddemanniana Rchb. f. 
bulbosa Ldl. v. C. Walkeriana 

Gardn. 

Buyssoniana O'Brien v. C. gra- 
nulosa Ldl. var. 
candida Hort. v. C. intermedia 

Grah. 

Canhammiana Hort. v. Laelio- 
cattleya Canhammiana Rolfe. 

Cassandra Hort. V. v. Laelio- 
cattleya Cassandra Rolfe. 

chocoensis Lind. et André v. 

C. labiata Ldi. var. Trianae 

chocoensis Veitch. 
chrysotoxa Lind. v. C. labiata 

Ldi. var. Dowiana Bat. 
citrina Ldl. 
coccinea Ldl. v. 

coccinea Rchb. f. 
crispa Ldl. v. Laelia crispa 

Rchb. f. 


Sophronitis 


Cattleya crocata Rchb. f. v. C. labiata 


Ldi. var. Eldorado Lind. 
Dawsoni: Warn.v.C.labiata Ldi. 

var. Luddemanniana Rchb. f. 
Dayana Hort. v. Laelia pumila 

Rchb. f. var. Dayana Rchb. f. 


Deckeri KI. v. C. Skinneri 
Ldi. 

Digbyana Ldi. v. Laelia Dig- 
byana Benth. 


dolosa Rchb. f. v. C. Walkeriana 
Gardn. var. 

domingensis Ldl. v. Laelia do- 
mingensis Pftz. 

Dowiana Bat. v. C. labiata Ldl. 
Var. 

Edithiana Warn. v. C. labiata 
Ldi, var. Mossiae Ldl. 

elatior Ldl. v. C. guttata Ldl. 

Eldorado Hort. Lind. v. C. la- 
biata Ldi. var. 

elegans Mort. v. Laelia elegans 
Rchb. f. 

cpidendroides Hort. v: C. lu- 
teola Ldl. 

exonensis Rchb. f. v. Laelio- 
cattleya exonensis Rolfe. 

flaveola Rchb. f. 

flavida KI. v. C. luteola Ldl. 

Forbesii Ldi. 

Gaskelliana Hort. v. C. labiata 
Ldi. var. 

Gibeziae L. Lind. et Rod, v. C. 
labiata Ldi. var. 

Gigas Lind. et Andr. v. C. labiata 
Ldi. var. Warscewiczii. 

Grahami Ldl. v. Laelia majalis 
Ldl. 

granulosa Ldl. 

— var. Buyssoniana O'Brien. 

Djanieana Hort. 

Russeliana Ldi. 

guttata Ldl. 

— var. immaculata Hort. 

Leopoldi Lind. et 
Rchb. f. 

lilacina Rchb. f, 

pernambucensis Rodig. 

Prinzii Rchb. £, 

Williamsiana Rchb. f. 

Harrisoniae Ldl. 

Holfordi Hort. v. C. luteola Ldl. 

imperialis Hort. v. C. labiata 
var. Warscewiczii Rchb. f. 

intermedia Grah. 

—  var.angustifolia B.et Berg. 

v. Laelia Perrinii Ldi. 
Gibeziae L. Lind. 
picturata Rolfe. 

iricolor Rchb. f, 

irroraia Rchb. f. v. Laeliocatt- 
leya irrorata Rolfe, 


— 


Cattleya isopetala Rchb.f. v. C. For- 


besii Ladl. 

Karwinskii Mart. v. C. citrina 
Ladl. 

Kimbaliana Lind. v. C. labiata 


Ldi. 

labiata Ldi. 

— a) genuina Rchb. f. 
— var. Gibeziæ Hort. 
— — Guayrana Hort. 
— —— jiricolor Hort. 
—  —  quadricolor Hort. 
— — superba Rgl. 
b) Mossiæ Ldi. 


— var. Alexandræ Will. 
Arnoldiana Goud,. 
aurantiaca Hort. 
aurea Hort. 
aureo - marginata 

Moore. 
autumnalis Hort. 
v. C. labiata. 

Blakei Moore. 
candida Rchb. f. 
chiriquensis Hort. 
complanata Moore. 
conspicua Moore. 
decora Will. 
Edithiana War. 
elegans Moore. 
fimbriata Moore. 
flammea Moore. 
grandiflora Moore. 
grandis Moore. 
Hardyana Will. et 
Moore. 
Helenae Moore. 
kermesina margi- 
nata Will. 
Lawrenceana 
Moore. 
Mac Morlandi 
Hort. Will. 
magnifica Hort. 

Will. 
majestica Will. 
Marianae Moore. 

marmorata Moore. 
Mooreana Warn. 
Nalderiana Hort. 
Napoleonis Moore. 
Pottsii Hort. Will. 
purpurata Moore. 
Reïineckiana Hort. 
Rothschildiana 

Moore. 

splendens Moore. 
striata Moore. 
superba Moore. 
Urselli Hort. 
venosa Moore. 
Victoriae Moore. 


1 EAN 


Cattleya labiata b) Mossiae Ldl. var. 
Williamsii Moore. 


c) Wageneri Rchb. f. 

d) Warscewiczii Rchb. f. 

—  Augusta-Victoria Sand. 

—  delicata Moore. 

superba Hort. 

—  gigas Lind. et André. 

—  imperialis Hort. v. C. 
1. W. delicata su- 
perba. 

—  superba Hort. v. C. 1. 
W. delicata superba. 

—  pallida Hort. 

—  quadricolor Ldl. 

—  Sanderiana Hort. 

—  Wilsoniana Rchb. f. 

e) Trianae Rchb. f. (nom- 


breuses variétés horti- 
coles). 
f) pallida Ldl. 


g) Lemoniana Ldl. 

h) Luddemanniana Rchb. f. 
(20 variétés). 

WarocqueanaL. Lind. v. C. 
labiata Ldl. 

i) Dowiana Bat. 

— aurea Lind. 

—  chrysotaxa Lind. 

—  marmorata Hort. 

—  Massaiana Hort. Will. 

—  Statteriana Hort. 

k) Eldorado Lind. et Rchb. f. 

—  crocata Rchb. f. 

— ornata Rchb. f. 

—  splendens Lind. 

—  virginalis Lind. et 

André. 
rosea Hort. Will. 

—  Wallisii Hort. v. C. I. 

var. virginalis. 

1) Gaskelliana Rchb. f. 

—  picta Hort. 

m) Mendelii Rchb. f. 

— bella Rchb. f. 

—  Bluntii Hort. 

—  cœlestis Hort. 

—  crispa Hort. 

—  grandiflora Moore. 

—  Jamesiana Hort. 

—  Leeana Hort. 

—  Measuresiana Hort. 

—  Morganae Moore. 

—  speciosa Hort. 

—  superbissima Hort. 

n) Percivaliana Rchb. f. 

— var. alba Hort. 

0) Warneri Moore. 

p) Whitei Rchb. f. 

g) Rex O'Brien. 

r) magnifica Rgl. 


Cattleya labiata atropurpurea Paxt.v. C. 


1. var. Mossiae Ldl. 
—  autumnalis Hort. v. C. la- 
biata Ldi. 
bella RChD LÉ. va Clare 
Mendelii Rchb. f. 
—  Lawrenceana Warsc. v. C, 
1. var. Dowiana Bat. 
— picta Hort. v. Cle 
Mossiae Ldl. 
Lawrenceana Rchb. f. 
— var. concolor Hort, 
delicata Hort. 
oculata Hort. 
rosea superba Hort. 
— Warsc."v. C‘labiatasedis 
var. Dowiana Bat. 
Lemoniana Ldl. v. C. labiata 
Ldl. var. Lemoniana Ldi. 

Leopoldi Lind. v. C. guttata Ldl. 
var. Leopoldi Rchb. f. 

Lindleyana Rchb. f. v. Laelia 
Lindleyana Hook, 

lobata Ldi. v. Laelia lobata 
Rchb. f, 

Loddigesii Rchb. f. 

— var. Harrisoniae Veitch v. 

C. Harrisoniae Ldl. 

—  maculata Hort. Will. 

Lucieniana Rchb. f. v.C. labiata 
var. Luddemanniana Rchb. f. 

luteola Ladl. d 

majalis Hort. v. Laelia majalis 
cie 

Malouana Hort. v. C. labiata 
Ldl. var. Trianae. 

mayrginata Paxt.v. Laelia pumila 
Rchb. f, 

maritima Ldl. v. C. Loddigesii 
Rchb. f. 

Massaiana Will. v. C. labiata 
Ldi. var. Dowiana. 

maxima Ldl. 

var. AlbuElOrt 

aphlebia Rchb. f. 

Backhousii Rchb. f. 

Hrubyana Lind. et 
Rod. 

Mendelii Rchb. f. v. C. labiata 
Edl'var: 

Meyeri Rgl. v. C. luteola Ldl. 

modesta Meyer v. C. luteola Ldl. 

Morganae Will. v. C. labiata 
Ldi. var. Mendelii. 

Mossiae Hook. v. C. labiata Ldl. 
var. Mossiae. 

Nuilsont Hort. v. Laeliocattleya 
Nilsoni Rolfe. 

nobilior Rchb, f. v. C. Walke- 
riana Gardn. 

ovata Ldi. v. 
Rchb. f. 


C. Loddigesii 


Cattleya pallida Ldl. v. C. labiata Ldl. 
Var, 
—  Papeiansiana Morr. v. C. Har- 
risoniana Rchb. f. 
— Percivaliana Rchb. f. v. C. 
labiata Ldl. var. 
—  Perrinii Hook. v. Laelia Perri- 
nji Ldi,. 
—  Pinelii Ldl. v. Laelia pumila 
Rchb. f. 
—  porphyroglossa Lind. et Rchb. f. 
—  pumila Hook. v. Laelia pumila 
Rchb. f. 
— — var. #4j0r Hook. v. Laelia 
praestans Rchb. f. 
—  quadricolor Ldl. v. C. labiata 
var. Warscewiczii Rchb. f. 
— — Bat. v. C. labiata Ldl. var. 
Trianae Rchb. f. 
—  vyeflexa Parm. v. Laelia crispa 
Ladl. 
—  Regnelli Warn. v. C. Schille- 
riana Rchb. f. 
— Rex O'Brien v. C. labiata Ldl. 
var. 
—  Rollissonii Hort. v. C. labiata 
Ldi. var. Warscewiczii Rchb.f. 
—  Rotschildiana Lind. v. Laelia 
Amanda Rchb. f. 
—  Rougieri Hort. v. C. labiata Ldl, 
v. Mossiae Ldl. 
—  Sanderiana Rchb.f. v. C. labiata 
Ldi. var. Warscewiczii Rchb.f. 
—  Schilleriana Rchb. f. 
—  — var. Amaliana Lind. 
—  Schofieldiana Rchb. f. v. C. gra- 
nulosa Ldi. var. 
—  Schomburgkit Lodd. v. C. su- 
perba Schomb. 
—  Schræœderae Hort. v. C. labiata 
Ldi. var. Trianae. 
—  Schræderiana Rchb. f. v,C. Wal- 
keriana Gardn. var. 
—  Skinneri Ldl. 
— — var. alba Rchb. f. 
—  — —  oculata Hort. 
— — —  parviflora Hook. 
—  speciosissima Hort. v. C. labiata 
Ldi. var. Luddemanniana. 
— _ spectabilis Paxt. v. Laelia pumila 


Rchb. f. 

—  sphenophora Morr. v.C. guttata 
Ldl. var. 

—  Séelzneriana Hort. v. Laelia 
elegans Ldl. 


—  superba Schomb. 

— — var. Bungerothii Herb. 

— — — splendens Lem. 

—  Trianaei Lind. et Rchb. f. v. C. 
labiata LdI. var. 

—  triophthalma Rchb. f. v. Laelia 
triophthalma Rchb. f. 


Cattleya velutina Rchb. f. 
— — var. Lietzei Rgl. 
— —  — punctata Rgl. 
—  vestalis Hfg. v. C. intermedia 
Grah. 
— Victoria-Regina Sand. 
—  violacea Hort. v. C. Loddigesii 
Rchb. f. 
—  virginalis Lind. et André v. 
C. labiata var. Eldorado. 
—  Wageneri Rchb. f, v.C. labiata 
var. Wageneri. 
—  Walkeriana Gardn. 
var, dolosa Rchb. f. 
— — — nobilior Rchb. f. 
— — —  Schrœderiana Rchb. f. 
—  Wallisii Hort. v.C. labiata Ldl. 
v. Eldorado. 
—  Wayneri Moore v. C. labiata 
Ldi. var. 
—  Warocqueana Lind. v. C. la- 
biata Ldl. 
— Warscewiczit Rchb. f. v. C. 
labiata Ldl. var. 
—  Whitei Rchb. f. v. C. labiata 
Ldl. var. 
—  Wäilsoniana Rchb. f. v. C. la- 
biata LdIl. var. Warscewiczii. 
—  Zenobia Hort. v. Laeliocattleya 
Zenobia Rolfe. 
Centranthera Scheidw. v. Pleurothallis 
R. Br. 
Centrochilus Schauer v. Platanthera 
L. C. Rich. 
Centrosis Thou. v. Calanthe KR. Br. 
Cephalanthera L. C. Rich. 
—  grandiflora Babingt. 
—  pallens Rich. v. C. grandiflora 
Babingt. 
—  rubra Rich. 
—  xiphophyllum Rchb. f. 
Ceraña Lour. v. Dendrobium Sw. 
Ceratium B1. v. Eria Ldl. 
Ceratobium undulatum Ldl. v. Dendro- 
bium undulatum KR. Br. 
Ceratochilus Ldl. v. Stanhopea Frost. 
Cestichis Thou., 
—  pendula Pfitz. 
Chaeradoplectron Schauer v. Platan- 
thera L. C. Rich. 
Chaetocephala Barb. Rodr. v. Pleuro- 
thallis R. Br. 
Chamasorchis Rich. 
—  alpina Rich. 
Chamaerepes Sprgl. v. Chamaeorchis 
Rich. 
Cheiropterocephalus Rodr. v. Micro- 
stylis Nutt. 
Cheirostylis Bl. 
—  marmorata BI. v. Dossinia mar- 
morata Ch. Morr. 
Chondrorhyncha Ldl. 


Chondrorhyncha fimbriata Ldl. 
Chrysobaphus Roxburghii Wall. v. 
Anoectochilus Roxburghii Ldl. 
Chysis Ldl. 
—  aurea Ldi. 
— — var. maculata Hook. 
—  bractescens Ldl. 
—  laevis Ldl. 
— — var. undulata Hort, 
—  Limminghei Lind. et Rchb. f. 
—  undulata Hort. v.C. laevis Ldi. 
var. 
Cionisaccus Kuhl et van Hass. v. Goo- 
dyera R. Br. 
Cirrhaea Ladl. 
—  aiyOpurpurea Hort. v. Gongora 
atropurpurea Hook. 
—  dependens Rchb. f. 
— — var. Fryana F1. Cab. 
— — — livida Hfg. 
— — — Russeliana Lodd. 
— — —  violaceo-virens Hff. 
a —  VIOlASCENS HITS. 
—  fuscolutea Hook. v. C. saccata 
Ldl. 
— -- Ldi.v. C. dependens Rchb. 
f. var. Fryana. 
—  Hoffmannseggii Heinh. v. C. 
dependens Rchb. f. 
—  livida Hffg. v. C. dependens 
Rchb. f, var. 
—  Loddigesii Ldl. 
—  obtusata Ldl. 
a — VAT. pallida Al. 
—  purpurascens Hffg. v. C. depen- 
dens Rchb. f. var. livida. 
— saccata Ldi. 
— éristis ! Lidl. v. 
Rchb. f. 
—  Viridipurpurea Lodd. v. C. de- 
pendens Rchb. f. 
—  Warreana Lodd. v. C. dependens 
Rchb. f, var. Fryana Hort. 
Cirrhopetalum Ladl. 
—  Amesianum Rolfe, 
—  auratum Ldi. 
—  Brienianum Rolfe. 
—  chinense Ldl. 
—  cornutum Ldi. 
—  Cumingii Ldi. 
—  Macraei Ldl. 
—  Mastersianum Rolfe. 
—  Medusae Ldl. v. Bulbophyllum 
Medusae Rchb. f. 
—  ornatissimum Rchb. f. 
—  picturatum Ldl. 
—  pulchrum N. E. Br. 
—  robustum Rolfe. 
—  Thouarsii Ldl. 
Cistella BI, v. Geodorum Jacks. 
Cladobium Ldl. v. Scaphyglottis Poepp. 
et End. 


C. dependens 


Cleisostoma BI. 
— crassifolium Ldl. 
—  Dawsonianum Rchb, f. 
—  Guibertii Lind. et Rchb. f. 
—  jonosmum Ldi. 
Clowesia Lal, v. Catasetum L.. C. Rich. 
Cochlia BI. v. Bulbophyllum Thou, 
Cochlioda Ladl. 
—  Noœzliana Rolfe. 
—  rosea Benth. 
—  sanguinea Benth. 
—  vulcanica Benth. 
Cœlia Ldl. 
—  Bauerana Ldi. 
— bella Rchb. f. 
—  macrostachya Ldl. 
— _ triptera Don. v.C.Bauerana Ldl. 
Cœloglossum Hartm. 
—  albidum Hartm. v. Gymnadenia 
albida Rich. 
—  viride Hartm. 
Cœlogyne Ldl. 
— alba Rchb. f. v. Otochilus albus 
Lal. 
—  angustifolia Rich. v. C. odora- 
tissima Ldi. var. 
— — VWight.v.C.breviscapa Ldl. 
—  Aythuriana Rchb. f. v. Pleione 
maculata Ldl. var. 
— _ articulata Rchb. f. v. Pholidota 
articulata Ldi. 
—  asperata Ldl. 
— _assamica Rchb. f. v. C. fusces- 
cens Ldi. var. brunnea Lidl. 
—  barbata Griff, 
—  birmanica Ldi. v. Pleione birma- 
nica Rchb. f. 
—  borneensis Rolfe. 
—  breviscapa Ldi. 
—  brunnea Ldi. v. C. fuscescens 
Ldl. var. 
—  camelostalix Rchb. f. v. Pholi- 
dota suaveolens Ldl. 
—  ciliata Hort. v. C. speciosa Ldl. 
—  Clarkei Rolfe. 
—  concolor Hort. v. Pleione prae- 
cox Don var, concolor Hort. 
—  conferta Par. et Rchb. f. v. C. 
ochracea Ldi. var. 
—  coronaria Ldl. v. Trichosma sua- 
vis Ldi. 
—  corrugata Wight. 
—  corymbosa Ldi. 
—  —  cristata Ldl. 
— — var. alba Moore. 
— — —  citrina Will. 
— — — major Will. 
— — —  Trenthami Hort. 
—  Cumingii Ldi. 
—  Dayana Rchb. f. 
—  elata Ldl. 
—  fimbriata Ldl., 


Cœlogyne fimbriata Hort. v. C. ovalis 
Ldl. 


flaccida Ldl. 

flavida Wall. 

Fœrstermanni Rchb, f. 

fuliginosa Ldl. 

fuscescens Ldl. 

— var. brunnea Lidl. 

Gardneriana Ldl. v. Neogyne 
Gardneriana Rchb. f. 

glandulosa Ldi. 

Goweri Rchb, f. 

graminifolia Par. et Rchb. f. 

Hookeriana Ldl. v. Pleione 
Hookeriana Ldl. 

humilis Ldl. v. Pleione humilis 
Don. 

Lagenaria Ldi. v. Pleione Lage- 
naria Ldl. 

lentiginosa Ldl. 

Lowii Paxt. v. C. asperata. 

maculata Ldl.v.Pleione maculata 
Lal. 

Massangeana Rchb. f. 

maxima Hort. 

media Hort. 

nervosa Wght v. C. glandulosa 
Lal. 

nitida Ldl. 

ocellata Ldl. 

— var. Boddaertiana Rchb. f. 

— —  maxima Rchb. f. 

ochracea Ldl. 

— var. conferta Par. et Rchb. f, 

odoratissima Ldl. l 

—  v. angustifolia Rchb. f, 

ovalis Ldi. 

pandurata Ldi. 

Parishii Hook. 

peltastes Rchb, f, 

plantaginea Ldl. 

pra:cox Ldl. v. Pleione praecox 
Don. 

punctulata Ldl., v. C. ocellata 
Lal. 

Reichenbachiana T. Moore v. 
Pleione Reichenbachiana Ldi, 

Rochussenii De Vries v. C. flac- 
cida. 

Rossiana Rchb. f. 

vubra Rchb. f. v. Pholidota 
rubra Lidl. 

salmonicolor Rchb. f. v. C. spe- 
ciosa Ldi. 

Sanderiana Rchb. f. 

Schilleriana Rchb. f. v. Pleione 
Schilleriana Ldi. 

sparsa Rchb. f. 

speciosa Ldl. 

— var. albicans Rchb. f. 

tenuis Rolfe: 

testacea Ldi. 


Cælogyne Thuniana Rchb. f. 


tomentosa Ldl. 

trifida Rchb. f, v. C. odoratis- 
sima Ldl. 

trisaccata Griff.v.Neogyne Gard- 
neriana Rchb. f. 

viscosa Rchb. f. 

Wallichiana Griff. v. Pleione 
praecox Don var. Wallichiana 
Ldi. 


Cœnorchis B1. v. Goodyera R. Br. 
Cohniella Pfitz. 


quekettioides Pfitz. 


Colax Ldl. 


aromaticus Spr. v. Lycaste aro- 
matica Ldl. 

Barringtoniae Ldl. v. Lycaste 
Barringtoniae Ldl. 

Harrisoniae Ldl. v. Bifrenaria 
Harrisoniae Ldl. 

jugosus Ldl. 

palmifolius Ldl. v. Maxillaria 
palmifolia Ldl, 

Parkeri Spr. v. Maxillaria 
Parkeri Hook. 

barvulus Spr. v. Maxillaria par- 
vula Hook. 

placanthera Ldl. v. C. viridis 
Rchb. f. var. 

Puydtii Lind. et André. 

racemosus Spr. v. Bifrenaria 
racemosa Ldl. 

viridis Rchb. f. 

— var. placanthera Ldl. 


Comparettia Pæœpp. et Endl. 


coccinea Ldli. 

falcata Poepp. et Endl. 
macroplectron Rchb. f. 
speciosa Rchb. f. 


Conchidium Grif. v. Eria Ldl. 
Corallorrhiza R. Br. 


innata R. Br. 


Cordylestylis Falc. v. Goodyera R. Br. 
Coryanthes Hook, 


Albertinae Karst. v. C. maculata 
Hook. var. 

Bungerothii Rolfe. 

Fieldingii Lindi. 

leucocorys Rolfe. 

macrantha Hook. 

macrocorys Rolfe, 

maculata Hook. 

— var. Albertinae Karst. 

— —  Parkeri Hook. 

—  —  punctata Ldl. 

speciosa Hook. 

Wolfii Lehm, 


Corycium Swartz. 


orobanchoides Sw. 


Corydandra Rchb. v. Galeandra Ldi. 
Cottonia Wight. 


peduncularis Rchb. f. 


— 426 — 


Cranichis luteola Sw. v. Polystachya 
luteola Ldl. 

Crepidium BI. v. Microstylis Nutt. 

Crinonia carnea B1.v.Pholidota carnea 
Ldl. 

Criosanthes Raf. v. Cypripedium L. 

Crocodilanthe Rchb. f. v. Pleurothallis 
R° Br 

Cryptocentrum Bnth. v. Mystacidium 
Lal. 

Cryptochilus Wall. 

—  sanguineus Wall. 
Cuitlanzina pendula Llav. et Lex. v. 


Odontoglossum citrosmum Ldl. 


Cyathoglottis Poepp. et End, v. Sobra- 
lia R. et P. 
Cybele Falc. v. Platanthera L, C. Rich. 
Cryptophorantus Rodr. 
— atropurpureus Rolfe. 
—  Dayanus Rolfe. 
Cyclosia maculata KI. v. Mormodes 
pardinum Bat. 
Cycnoches Ldl. 
—  aureum Ldi. 
—  barbatum Ldl. v. Polycychnis 
barbata Rchb,. f. 
—  chlorochilon Klotz. 


—  cucullatum Ldi. v. C. Loddi- 
gesii Ldl. 

—  Egerionianum Bat., ÿ de C. ven- 
tricosum. 


—  Loddigesii Ldil. 
—  maculatum Ldl. 
Ladl 
—  musciferum Ldl. v. Polycychnis 
muscifera Rchb. f. 
—  pentadactylon Ldi. (fleur mâle 
du C. ventricosum Bat. 
— peruvianum Rolfe, 
—  Pescatorei Ldi, 
—  stelliferum Lodd. v. C. ventri- 
cosum. 
—  ventricosum Bat. 
var. stelliferum Lodd, 
Warscewiczii Rchb. f. 
rio Thw. v. Sarcochilus R. 
Br 
Cylindrolobus BI. v. Eria Ldl. 
Grp SW. 
affine Griff. 
—  aloifolium Sw. 
—  altissimum Sw. v. 
altissimum Sw. 
—  bambusaefolium Roxb. v. Arun- 
dina bambusaefolia Ldl. 
—  bicolor Ld]. 
—  canaliculatum R. Br. 


v. Loddigesii 


Oncidium 


— chinense Ait. v. C. ensifolium 
Sw. 

—  chloranthum Ldl. 

—  çcoccineurm Sw. v. Ornithidium 


coccineum Rchb. f. 


Cÿmbidium Dayanum Rchb. f. 


dependens Lodd. v. Cirrhaea 
dependens Rchb. f, 

Devonianum Paxt, 

eburneum Ldi. 

— var. Philbrickianum Hort. 

roseum Hort, 

Williamsianum Rchb. 
f 


elegans Ldi. v. Cyperorchis ele- 

gans BI. 

ensifolium Sw. 

Finlaysonianum Ldi. 

— var. atropurpureum Veitch. 

fragrans Hort. v. C. ensifolium 

SW. 

giganteum Wall. 

— var. Lowianum Hort. v. 
C. Lowianum Rchb. f. 

grandiflorum Griff, 

— var. punctatum Cogn. 
guttatum Ldl. v. Oncidium luri- 
dum Ldi. var. guttatum Ldl. 
Hookerianum Rchb. f. v. C. 

grandiflorum Griff, 
Huttoni Hook. f. v. Gramman- 
gis Huttoni Benth. 

hyacinthinum Sw. v. Bletilla 
hyacinthina Rchb. f. 

javanicum Bl. v. C. lancifolium 
Hook. 

juncifolium Willd. v. Oncidium 
Cebolleta Sw. 

lancifolium Hook. 

lineare Sw. v. Isochilus linearis 
R. Br. 

Lowianum Rchb, f. 

— var. superbissimum Lind. 

madidum Ldl. 

marginatum Ldl. v. Maxillaria 

tricolor Hook. 
Mastersii Griff. v. Cyperorchis 
Mastersii Benth. 

nodosum Sw. v. Brassavola no- 
dosa Ldl. 

ochroleucum Ldl. v. Camaridium 
ochroleucum Ldl. 

Parishii Rchb. f. 

pendulum Sw. 

— var. atropurpureum Ldl. v. 
C. Finlaysonianum Ldl. 
var. 

bictum Sw. Geodorum purpu- 

reum Ldl, 

sinense Ait. v. C. ensifolium Sw. 

tesselatum Hort. v. Vanda Rox- 

burghii R. Br. 

tigrinum Par. 

tripterum Don. v. Cœlia Baue- 

rana Ldl. 
umbellatum Sprgl. v. Cirrhope- 
talum Thouarsii Ldl. 


— 427 — 


Cymbidium utriculatum Sw.v.Govenia Decaisnea Brgn. v. Prescottia Ldl. 
lagenophora Ldi. Dendrobium Sw. 


Cynosorchis T hou, 
—  grandiflora Ridl. 
Cyperorchis BI. 
—  elegans BI. 
—  Mastersii Bnth. 
—. — var. album Rchb. f. 
— — — superbum Hort. 
Cypripedium L.(1) 
—  acaule KR. Br. 
— album Aït. v. C. spectabile Sw. 
var. 
— arietinum KR. Br. 
—  bulbosum L. v. Calypso borealis 
Sw. 
—  Calceolus L. 
—  californicum A. Gr. 
—  canadense Mchx v. C. spectabile 
SW. 
—  candidum Willd. 
—  flavescens Red. v. C. pubescens 
Willd. 
—  guttatum Sw. 
—  hirsutum Mill. v. C. spectabile 
Sw. 
—  humile Salisb. v.C.acauleR. Br. 
—  japonicum Thunb. 
—  macranthum Sw. 
—  montanum Dougl. 
—  parviflorum Salisb. 
—  pubescens Willd. 
—  Reginae Walt. v. C. spectabile 
Sw. 
—  spectabile Sw. 
—  — var. album Sweet. 
—  ventricosum Sw. 
Cyrtochilum H. B.K. v. Oncidium Sw. 
—  bictoniense Bat. v. Odontoglos- 
sum bictoniense Ldl. 
—  citrinum H. B. K. v. Oncidium 
concolor Hook. 
—  Karwinskii Ldi. v. Odontoglos- 
sum laeve Ldi. 
—  pardinum Hook. v. Odontoglos- 
sum pardinum Ldl. 
Cyrtopera Ldl. v. Eulophia R. Br. 
Cyrtopodium R. Br. 
—  Andersonii R. Br. 
—  cardiochilum Ldl. 
—  flavum Hort. v. Eulophia flava 
Hook. f, 
—  Saintlegerianum Rchb. f. 
—  Legerianum Hort. v. C. puncta- 
—  punctatum Ldi. 
Cytherea Sal. v. Calypso Sal, 
Cytheris Ldl. v. Nephelaphyllum BI. 


aduncum Wall, 

aemulum R. Br, 

— var. album Hort. 

aggregatum Roxb. 

— var. majus Hort. 

A lbertisii Hort.v.D.d'Albertisii 

Rchb. f. 
albo-luteum Hort. v. D. thyrsi- 
florum Rchb. f. 
albo-sanguineum Ldi. 
albo-viride Par. v. D. scabrilin- 
gue Ldi. 
album Hort. v. D. bigibbum 
Ldl. var. candidum Rchb. f. 

—  Wght. v. D. aqueum Ldl. 

amboinense Hook. 

amethystoglossum Rchb. f. 

amœnum Wal]. 

amplum Wall. 

anosmum Ldi. v. D. superbum 

Rchb. f. 
Antilope Hort, v. D. d'Albertisii 
Rchb. f,. 

Aphrodite Rchb. f. 

aqueum Lidl. 

Arachnites Rchb. f. 

Augustae-Victoriae Kränzl, 

aureo-roseurn Hort. v. D, aureum 

Ldl. var. rhombeum Hook. 

aureum Ldl. 

— var. album Hort. 

—  —  aurantiacum Hort. v. 
D. aureum Ldl. var. 
rhombeum Hook. 

— —  Henshallii Hook. 

— —  pallidum Ldl. 

— —  philippinense Rchb. f. 

— —  rhombeum Hook. 

barbatulum Ldl. 

Bensoniae Rchb. f. 

— var, album Hort. 

— —  xanthinum Rchb. f. 

bicameratum Ldi. 

bigibbum Ldl. 

— var. albo-marginatum L. 
Lind, 

— —  candidum Rchb. f, 

— —  superbum Rchb. f. 

binoculare Rchb, f. 

Boxallii Rchb. f. 

bracteosum Rchb. f. 

breviflorum Ladl. v. D. bicame- 

ratum Ladl. 

brisbanense Rchb. f. v. D. graci- 

licaule F. Muell. 


(1) Les Cypripédinées connues dans les collections sous le nom de Cypripe- 
dium et non renseignées à cette place, doivent être cherchées aux mots Paphiopedium 
ou Selenipedium soit dans l'index, soit au tableau des hybrides. 


— 428 — 


Dendrobium Brymerianum Rchb. f. 


Bullerianum Hook. v. D. gratio- 
sissimum Rchb. f. 

calamiforme Hort. v. D. tereti- 
folium R. Br. 

Calceolaria Hook. v. D. moscha- 
tam Wall. var. 

Calceolus Hort. v. D. moscha- 
tum Wall. var. 

Cambridgeanum  Paxt. 
ochreatum Ldi. 

canaliculatum R. Br. 

capillipes Rchb, f. 

cariniferum Rchb. f. 

— var, Wattii Hook. 

castum Hort. v. D. Zinawianum 
Rchb. f. 

chlorops Ldl, 

chrysanthum Ldi. 

— var. microphthalmum 

Rchb. f. 
superbum Hort. 


ve nD: 


‘ chryseum Rolfe. 


chrysocrepis Par. et Rchb. f. 

chrysotis Rchb. f, v. D. Hooke- 
rianum Ldl. 

chrysotoxum Ldl. 

— var. suavissimum Veitch 
v. D. suavissimum Rchb, f. 

superbum Hort. 

ciliatum Par. 

— var. breve Hort. 

ciliatum Sw. v. Lycaste Barring- 
toniae Ldl. 

cinnabarinum Rchb. f. 

clavatum Ldl. 

cævrulescens Ldi. 
Ldi. var. 

crassinode Rchb. f. 

— var. albiflorum Rchb. f. 

Barberianum Rchb. f. 

crepidatum Ldl. 

cretaceum Ldi. 

crystallinum Rchb. f. 

cruentum Rchb. f. 

crumenatum Sw. 

cucullatum R. Br. v. D. Pierardi 
Roxb. 

— var. giganteum Hort. v. D. 
primulinum Ldi. var. 

cucumerinum Fitzg. 

cumulatum Ldi. 

cupreumHerbert v.D. moschatum 
Wall. var. cupreum Rchb. f. 

cymbidioides Ldi. 

d’Albertisii Rchb. f. 

Dalhousieanum Wall. 

Dearei Rchb. f. 

densiflorum Wall. 

— var. albo luteum Hook. 

album Hort. v. var. 
Schrœderi Hort. 


v. D. nobile 


Dendrobium densiflorum var. Gallicea- 


num Lind. 

Schrœæderi Hort. Wall. 

Walkerianum Hort. 

Devonianum Paxt. 

— var. candidulum Rchb. f. 

Elliottianum Rchb. f. 

rhodoneurum Rchb, f. 

discolory Ldi. v. D. undulatum 
R°BrE 

dixanthum Rchb. f, 

Draconis Rchb. f. 

eburneum Hook. v. D. Draconis 
Rchb. f. 

erythropogon Rchb, f. 

erythroxanthum Rchb. f. 

Falconeri Hook. 

— var. albidulum Rchb. f. 

delicatum Hort. 

giganteum Hort. 

Jacksoni Morr. 

Farmeri Paxt. 

— var. albiflorum Hort. 

aureo-flavum Hook. 

aureum Hort. 

ferox Hort. v. D. macrophyl- 
Jlum A, Rich. 

fimbriatum Hook. 

— var. oculatum Hook. 

Findlayanum Par. et Rchb. f. 

formosum Roxb. 

— var. giganteum Hort. 

Fredianum Hort. v. D. longi- 
cornu Ldi, 

Freemanni Hort. v. D. litui- 
florum Ldi. var. 

fuscatum Ldi. 

Fytchianum Bat. 

— var. roseum Hort. 

Galliceanum Lind. v. D. densi- 
florum Rchb. f, var. 

Gibsonii Paxt. 

Goldiei Rchb. f. v. D. superbiens 
Rchb. f. 

gracilicaule F. Muell. 

grandiflorum H. B. K. v. Maxil- 
laria grandiflora Ldl. 

gratiosissimum Rchb. f. 

Griffithianum Ldi. 

— var, Guibertii Du Buyss. 

Guibertii Lind. v. D. Griffithia- 
rum Ldl. var, 

Hanburyanum Rechb. f. v. D. 
lituiflorum Ldl. 

Havrvisoniae Hook. v. Bifrenaria 
Harrisoniae Ldl. 

Harveyanum Rchb. f. 

Hasseltii BI. 

hedyosmum Bat. v. D. scabrilin- 
gue Ldi. 

Henshallii Hort. v. D. transpa- 
rens Wall. 


| 
| 
* 


Dendrobium heferocarbum Wall. v. D. 


aureum Ldl. 

heterostigma Rchb. f. 

Heyneanum Hort. v. D. barba- 
tulum Ldl. 

Heyneanum Ldil. 

Hillii Hook. v. D. speciosam 
var. 

Hookerianum Ldl. 

Huttoni Rchb. f. 

inauditum Rchb. f. 

infundibulum Ldl. 

— var. Carneopictum Rchb. f. 

—. —  famesianum Hort. v. 
D. Jamesianum Rchb. f. 

injundibulum Rchb. f. v. D. 
formosum Roxb. 

Jamesianum Rchb. f. 

japonicum Ldl. 

javanicum Sw. v. Taïnia stellata 
Pfitz. 

Fenkinsis Wall. v. D. aggrega- 
tum Rchb. f. 

Johasoniae F. Mueller. 

Kingianum Ldi. 

— var. album Hort. 

Kuhlii v. D. thyrsoides Rchb. f. 

lamellatum Ldl. 

lasioglossum Rchb. f. 

leucochlorum Rchb. f. 

leucolophotum Rchb. f. 

Linawiaoum Rchb. f. 

— var. majus Will. 

Lindleyi Steud. v. D. aggrega- 
tum Roxb. 

linguaeforme Sw. 

lituiflorum Ldl. 

— var. candidum Rchb. f. 

— —  Freemanni Rchb. f. 

— —  robustius Rchb. f. 

Loddigesii Rolfe. 

longicornu Ldl. 

— var. majus Hort. 

Lowii Ldl. 

lacens Rchb. f. 

luteolum Bat. 

— var. chlorocentrum Rchb. f. 

Mac-Carthiae Thw. 

Mac-Farlanei Rchb. f. v. D. 
Johnsoniae F. Mueller. 

macranthum Hook. v. D. super- 
bum Rchb. f. 

macrophyllum LAl. v. D. super- 
bum Rchb. f. 

macrophyllum A. Rich. 

— var. Dayanum Low. 

— —  giganteum Hort. 

—  Veïtchianum Hort. 

FA Hort. v. D. macrophyl- 
lum A. Rich. 

marginatum Bat. v. D. xantho- 
phlebium Läl. 


Dendrobium marmoratum Rchb. £ 


mesochlorum Ladl. 

Mirbelianum Gaudich. 

Moblianum Rchb. f. 

monsliforme Hook. v. D. Lina- 
wiaoum Rchb. f, 

monsliforme Sw. v. D. japonicum 
Läl. 

Moorei F. Mueller. 

moschatum Wall. 

— var. cupreum Rchb. f. 

moulmeinsnse Hort. non Parish. 
v. D. infundibulum Ldl. 

mutabile Ldl. 

nobile Ldl. 

— var, Backhousianum Hort, 

— —  cœærulescens Rchb. f. : 


— —  Cooksonianum Rchb. f.. 


— — elegans Hort. 

— — formosum Hort. v. D. 
nobile var. interme- 
diam Hort. 

—  —  intermedium Hort. 

— —  nobilius Rchb. f. 

— — pallidiflorum Hook v. 
D. primulinum Hook. 
Var. 

— — pendulum Hort. 

— —  Ruckeri Hort. v. D. n. 
v. pendulum Hort. 


— —. Schrœderianum Rchb.f. 


— —  Tollianum Rchb. f. 

— —  Wallichianum Hort. 

nodatum Hort. v. D. Aphrodite 
Rchb. f. 

ochreatum Ldi. 

Palpebrae Ldl. 

Parishii Rchb. f. 

— var. albens Hort. 

Paxtons Ldl. v. D. chrysanthum 
Ldi, 

Paxtons Paxt, v. D. fimbriatum 
Hook. var. oculatum Hook. 

Phalaenopsis Fitzg. 

— var. Statterianum Hort. 

pictum Rchb. f. 

Pierardi Roxb. 

— var. latifoljium Hort. 

planibulbe Ldl. 

polyphlebium Rchb. f. v. D. rho- 
dopterygium Rchb. f. 

primulinum Ldi. 

— var. giganteum Hort. 

profusum Rchb. f. 

pulchellum Roxb. 

bulchellum Lodd. v. D. Loddi- 
gesii Rolfe. 

purpureum Roxb. 

— var. candidulom Rchb. f, 

rhodopterygium Rchb. f. 

rhombeum Ldl. v. D. aureum 
Ldl. var. 


29 


450 


Dendrobium roseum Hort. v. D. crepi- 
datum Ldl. 
—  yotundifolium Hort. v. D. spe- 
ciosum Sm. var. 
—  Ruckeri Ldl. 
—  rutriferum Rcehb. f, 
—  sanguinolentum Ldl. 
— — var. superbum Hort. 
—  Sarcostoma Hort. v. D. macro- 
" phyllum A. Rich. var. Veit- 
chianum Hort. 
—  scabrilingue Ldi. 
—  Schréderi Will. v. D. densiflorum 
Wall. var. 
—  sculptum Rchb. f. v. D. formo- 
sum Roxb. 
—  secundum Wall. 
— — var. niveum Rchb. f. 
—  senile Par. 
—  Smilliae F. Muell. 
—  speciosum Smith. 
— — var. Bancroftianum Rchb.f. 
a ERINMI HOnt: 
—  squalens Ldi. v. Xylobium squa- 
lens Ldl. 
—  Statterianum Hort. v. D. Pha- 
laenopsis Rchb. f. var. 
—  Stratiotes Rchb. f. 
—  strebloceras Rchb. f. 
val. CROSSIANUMRCRD.f. 
— stuposum Ldl. 
—  suavissimum Rechb. f. 
—  sulcatum Ldl. 
— superbiens Rchb. f. 
— superbum Rchb. f. 
— — var. anosmum Rchb. f. 
a  — BurkeiRCHb:f 
— — —  Dayanum Hort. v. var. 
anosmum Rchb. f. 
a D DEG TER ELOET. OV. D), 
Dearei Rchb. f. 
— — — giganteum Rchb. f. 
D 'HuttonRChb.E. 
— — —  purpureum-marginatum 
Rchb. f. 
—  Tattonianum Bat. v. D. canali- 
culatum R. Br. 
—  taurinum Lidl. 
—  teves Roxb. v. Vanda teres Ldl. 
—  teretifolium KR. Br. 
—  tetragonum A. Cunn. 
—  thyrsiflorum Rchb.f. v.D. densi- 
florum var. albo-luteum. 
—  thyrsoides Rchb. f. 
—  tipuliferum Rchb. f. 
—  tortile Ldl. 
— — var. roseum Hort. 
—  transparens Wall. 
—  Treacherianum Rchb. f. 
—  ériadenium Hook. v. D. mutabile 
Ldl. 
—  undulatum KR. Br. 


Dendrobium Vettchianum Hort. v. D. 
macrophyllum A. Rich. var. 
Veitchianum Hort. 

—  venustum Theysm. et Binn. 

—  virgineum Rchb. f. 

—  viridi-roseum Rchb. f. 

—  Wallichii Hort. v. D, nobile 
Ldl. var. Wallichianum Hort. 

—  Wardianum Warner, 

—  —  var.assamicum Veitch. 

— — — candidum Rchb. f. 

— — —  giganteum Hort. Will. 

— — — Lowii Burb. v. var. 

giganteum Hort. Will. 

— — —  Schrœæœderianum Hort. 

—  Williamsianum Rchb. f. 

—  Williamsoni Day et Rchb. f. 

—  xanthophlebium Ldi. 

Dendrochilum Bl. 

—  aurantiacum BI. 
—  pallidiflavens BI. 

Dendyocolla BI. v. Sarcochilus R. Br. 

Dendrolirium BI. v. Eria Ldl. 

Desmotrichum Ldl. v. Dendrobium 

SW. 
Diacrium Benth. 
—  bicornutum Benth. 
—  bigibberosum Benth. 
Dialissa Ldil. v. Stelis Sw. 
Dichaea Ldi. 
— vaginata Rchb. f. 
Dichopus BI. v. Dendrobium Sw. 
Dicrypta discolor Ldl. v. Maxillaria 
discolor Ldl. 

Didactyle Ldl. v. Bulbophyllum Thou. 

Dienia Ldl. v. Microstylis Nutt. 

Dilochia Ldl. v. Arundina BI. 

Dinema Ldl. v. Epidendrum L. 

Diphyes BI. v. Bulbophyllum Thou. 

Dipodium R. Br. 

—  paludosum Rchb. f. 

Disa Berg. 

— atropurpurea Sond. 

—  Barelli Hort. v. D. grandiflora 
L. var. superba. 

—  cornuta Sw. 

—  crassicornis Ldl. 

—  Draconis Sw. 

—  grandiflora L. 

—  — var. superba Moore. 

—  megaceras Hook. f. v. D. crassi- 
cornis Ldl. 

—  racemosa L. f. 

—  tripetaloides N. E. Br. 

—  uniflora Berg.v. D.grandiflora L. 

Dossinia Ch. Morr. 

—  marmorata Ch. Morr. 
— — var. Dayi Hort. 
— — — virescens Hort. 

Dubois-Raymondia Karst. v. Pleuro- 

thallis R. Br. 

Echioglossum Bl. 


Fa © Lie 
Epidendrum Caftleyae Hook. v.Cattleya 


Echioglossum javanicum BI. 

Eckardtia Rchb. v. Peristeria Hook. 
Empusa Läl. v. Liparis L. C. Rich. 
Encyclia P. et Endl. v. Polystachya 


Ldl 


Encyclium Ldi. v. Epidendrum L. 
Ephippium B1. v. Cirrhopetalum Ldl. 
X Epicattleya Rolfe voir Orchidées 


hybrides. 


Epidendrum L. 


aciculare Bat. 

Acklandiae Rchb. f. v. Cattleya 
Acklandiae Ldl. 

aemulum Ldl. v. E. ‘fragrans 
Sw. 

affine Focke v. E. oncidioides 
Lal. 

alatum Bat. 

— var. majus Hort. 

aloifolium L.v.Cymbidium aloi- 
folium Sw. 

— Bat. v. E. falcatam Ldi. 

altissimum Jacq. v. Oncidium 
altissimum Sw. 

amabile Godefr. v. E. dichro- 
mum Ldl. 

arachnoglossum Rchb. f. 

aromaticum Bat. 

atropurpureum Willd. 

— var. album Hort. 

Randi Lind. et Rodig. 

roseo-purpureum Hort. 

roseum Rchb. f. 

aurantiacum Bat. 

aureum Ldl. v. E. aurantiacum 
Bat. 

auritum Ldi. 

Barkeriola Ldl. 

Barringtoniae Sm. v. Lycaste 
Barringtoniae Ldi. 

basilare K1. v. E. Stamfordianum 
Bat. 

bicameratum Rchb. f. 

bicolor Rchb. f. v. Cattleya bico- 
lor Ldi. 

bicornuturs7 Hook. v. Diacrium 
bicornutum Benth. 

bigibberosum Rchb. f. v. Dia- 
crium bigibberosum Benth. 

bracteolatum Prsl. v. E. radia- 
tum Ldi. 

bractescens Ldl. v. E. aciculare 
Bat. 

Brassavolae Rchb. f. 

calochilum Grah. v. E. alatum 
Bat. 

Candollei Ldl. 

Capartianum L. Lind. v.E. God- 
sefianum Rolfe. 

carthaginense L. v. Oncidium 
carthaginense Sw. 

Catillus Rchb. f. et Warsc. 


luteola Ldl. 

caudatum L. v. Brassia caudata 
Ldl. 

cepiforme Hook. v. E. Candollei 
Ldl. 

chinense L. v. Cymbidium ensi- 
folium Sw. 

chiriquense Rchb. f. v. E. vari- 
cosum Ldl. 

ciliare L. 

— var. cuspidatum Ldi. 

minor Hort. 

cinnabarinum Salzm. 

citrinum Rchb. f. v. Cattleya 
citrina Ldl. 

cnemidophorum Ldl. 

cochleatum L. 

connivens Hort. v. Eulophidium 
maculatum Pftz. 

conopseum R. Br. 

Cooperiananum Bat. 

coriaceum Hort. v. E. variegatum 
Hook. var. 

crassifolium Hook. v. E. elon- 
gatum Jacq. 

crassilabium Poepp. et Endl. v. 
E. variegatum Hook. 

criniferum Rchb. f. 

cuspidatum Lodd. v. E. ciliare 
L. var. 

cyclotellum Rchb. f. 

cycnostalix Rchb. f. v. E. Stam- 
fordianum Bat, 

densiflorum Hook. 

dichromum Ldi. 

— var. striatum Rchb. f. 

discolor À. Rich. v. E. noctur- 
num L. 

dolosum Rchb. f. v. Cattleya 
Walkeriana Garda. var. 

eburneum Rchb. f. 

elatius Rchb. f. v. Cattleya gut- 
tata Ldl. 

elegans Rchb. f. 

ellipticum Grah. v. E.elongatum 
Jacq. 

elongatum Jacq. 

Endresii Rchb. f, 

erubescens Ldl. 

evectum Hook. f. 

falcatum Ldi. 

falsiloquum Rchb. f. v. E. pani- 
culatum R. et P. 

fimbriatum H. B. K. 

floribundum Hort. v. E. orna- 
tum Lem. 

Flos-aëris L. v. 
Rchb. f. 

Forbesii Rchb. f. v. Cattleya 
Forbesii Ldl. 

Jormosum KI. v. E. alatum Bat. 


Renanthera 


RS 


Epidendrum fragrans Sw. 


— var. magnum Hort. 

Friderici-Guilielmi Warsc. et 
Rchb. f. 

fucatum Ladl. 

fulgens Brgn. v. E. Schomburg- 
kii Lal. 

glumaceum Lal. 

glutinosum Scheidw. v. E. odo- 
ratissimum Ldl, 

Godseffianum Rolfe, 

gracile Ldi. 

Grahami Hook. v. E. phoeni- 
ceum Ld]l. var. vanillosmum 
Lind. 

grandiflorum Sw. v. Stanhopea 
Bucephalus LdI. 

graniticum Ldi. v. E. 
dioides Ldi, 

granulosum Rchb. f. v. Cattleya 
Lal. 

guatemalense KI. v. E. 
dioides Ldl. 

guttatum L. v. Oncidium luri- 
dum Ldi, var. 

Hanburyi Ldl. 

Hayrrisonianum Rchb. f. v. Catt- 
leya Harrisoniae LdlI. 

Humboldtii Rchb. f. v. Schom- 
burgkia Humboldtii Rchb. f. 

humileSw.v.Pleionehumile Don. 

ibaguense H. B. K. 

imperator Lind. v. E, Catillus 
Rchb. f. et Warsc. 

incumbens Ldl. v. E. aromati- 
cum Bat. 

intermedium Rchb. f. v. Catt- 
leya intermedia Grah. 

inversum Ladl. 

ionosmum Ldi. 

juncifolium L. v. 
Cebolleta Sw. 

Karwinskyi Rchb. f. v. E. bica- 
meratum Rchb. f. 

labiatum Rchb. f. v. Cattleya 
labiata Ldi. 

lacertinum Ldl, 

lacerum Ldi. 

lactiflorum À. Rich. v. E. falca- 
tum Ldi. 

lamellatum Ldl. v. E. stenope- 
talum Hook. 

lancifolium Hort. v. E. cochlea- 
tum Ldl. 

Laucheanum Rolfe. 

latilabre Ldl. 

leiobulbon Hook. v. E. varico- 
sum Bat. 

leucochilum Ki. 

Liliastrum Salzm. v. Sobralia 
Liliastrum Ldi. 

Lindleyanum Rchb. f. 


onci- 


onci- 


Oncidium 


Epidendrum Lindleyanum var. Centerae 


Endr. et Rchb. f. 

longipetalum Ldl. v. E. alatum 
Bat. 

Luneanum A. Rich. v. E. vari- 
cosum Bat. 

luteolum Rchb. f. v. Cattleya 
luteola Lal. 

macrochilum Hook. v. E. atro- 
purpureum Willd. 

maculatum Hort. v. E. prisma- 
tocarpum Rchb. f. 

Mantinianum Rolfe. 

marginatum KI. v. E. radiatum 
di: 

maximum Rchb. f. v. Cattleya 
maxima Ldi. 

Medusae Benth. 

melanocaulon Rchb. f. 

myrianthum Ldl. 

Nanodes Hort. v. E. Medusae 
Benth. 

nemorale Ldl. 

— var. majus Hort. 

nigromaculatum Hort. v. E, 
prismatocarpum Rchb. f. 

nocturnum L. 

nutans Sw. 

ochraceum Ldl. 

ochranthum A. Rich. v. E. 
virens Ldl. 

odoratissimum Ldl. 

oncidioides Ldl. 

ornatum Lem. 

pachycephalum K1. v. E. varie- 
gatum Hook. 

pallidifiorum Hook. 

bamplonense Rchb. f. v.E. varie- 
gatum Hook. 

paniculatum R. et P. 

— Hort. v. E. myranthum Ldi. 
Parkinsonianum Hook. v. E. 
falcatum Ldl. 
pastoris Lind. v. 

BG 
patens Sw. 
paytense Rchb. f. 
phœniceum Ldl. 
— var. vanillosmum Lind. 
phymatoglossum Rchb. f. v.E. 
varicosum Bat. 
polyanthum Ldl. 
polybulbon Sw. 
praecox Sw. v. Pleione praecox 
Don. 
primuloides Hort. v. E. aroma- 
ticum Bat, 
prismatocarpum Rchb. f, 
pristes Rchb. f. v. E. Schom- 
burgkii Ldl. 
pseudepidendrum Rchb. f. 
pterocarpum Ldi. 


E. gracile 


} 
1 
L 
- 


LÉ 2. né, = ni ds. 


"0 A RS - 1 


So, 


Epidendrum punctatum L. v. Cyrtopo- 
dium punctatum Ldl. 
—  purum Ldl. 
—  pygmaeum Hook. 
—  quadratum K1. v. E. varicosum 


—  radicans Pav. 

— — var. fuscatum Rchb. f. 

—  Randi Rodr. v.E.atropurpureum 
Willd. var. 

—  raniferum Ldi. 

—  rhizophorum Bat. v. E. radicans 
Pav. 

—  Sagracanum À. Rich. v. E. fu- 
catum Lil. 

—  Sanguineum Sw. 

—  Sceptrum Ldl. 

—  Schillerianum Rchb. f. v. Catt- 
leya Schilleriana Rchb. f. 

—  Schomburgkii Ldl. 

—  selligerum Bat. 

—  sinuatum Ldl. v. E. tovarense 
Rchb. f. 

—  Skinneri Bat. 

— — var. superbum Hort. 

—  socorrense Rchb. f. et Warsc 

—  spectabile Rchb. f. 

—  Spruccanum Läl. v. E. noctur- 
num L.. 

—  squalidum Ldl. v. E. bicamera- 
tam Rchb. f. 

—  Stamfordianum Bat. 

— — var. Lawrenceanum Hort, 

— — —  Leeanum Rchb. f. 

a. — pictum HO0k- 

— — —  Wallacei Rchb. f. 

—  stenopetalum Hook. 

—  superbum Rchb. f. v. Cattleya 
superba Schomb. 

—  syringothyrsus Rchb. f. 

—  tampense Ldl. 

—  Éibicinis Bat. v. Schomburgkia 
tibicinis Ldl. 

—  tigrinum Ldi. 

—  tovarense Rchb. f. 

—  trachychilum Lidl. 

— _ tricolor Rolfe. 

—  tridens Poepp. et End. v. E. noc- 
turnum L. 

—  tripterum Sm. v. Coelia Baue- 
rana Ldl. 

—  triquetrum Sw. v. Oncidium tri- 
quetrum Ldl. 

—  s#mbellatum Forst. v. Cirrhope- 
talum Thouarsii Ldl. 

—  undulatum Sims. v. Oncidium 
carthaginense Sw. 

—  Uro-Skinneri Hort. v. E. pris- 
matocarpum Rchb. f. 

— Vanilla L. v. Vanilla aromatica 
Sw. 


Epidendrum varicosum Bat. 
—  variegatum Hook. 
—  — var. coriaceum Ldl. 
—  verrucosum Hort. v. E. nemorale 
Ldl. 
— vesicatum Ldl. 
—  violacum Lodd. v. Cattleya 
Loddigesii Rchb. f. 
—  virens Ldi. 
—  virgatum Läl. 
— vitellinum Lil. 
— — var, maÿjus Veitch. 
—  Wageneri KI. v. E. virens Ldl. 
—  Walkerianum +. Cattleya Wal- 
keriana Gardn. 
—  Wallisii Rchb. f. 
—  xanthinum Ldl. 
Xipheres Rchb. f. 
mr L. C. Rich. 
—  latifolia All. 
—  palustris Crtz. 
—  rubiginosa Crtz. 
Efibhora Ldl. v. Polystachya Hook. 
Epipogon Gmel. 
—  Gmelini Rich. 
X Epiphronitis Rolfe voir Orchidées 
hybrides. 
Epistephium Kath. 
—  Williamsii Hook. 
Epithecium Kn. et Westc. v. Epiden- 
drum L. 
Eria Läl. 
—  afinis Grif. v. E. bractescens 


—  armeniaca Läl. v. E.ornata Ldl. 

—  Barbarossa Rchb. f. 

—  barbata Rchb. f. 

—  bicolor Ldi. 

—  bicristata Ldl. 

—  bipunctata Ldl. 

—  clavicaulis Wall. 

—  cochleata Ldl. 

—  concolor Par. et Rchb. f. 

—  Corneri Rchb. f. 

—  coronaria Rchb. f. v. Trichosma 
suavis Ldl. 

—  Curtisii Rchb. f. 

—  cylindripoda Grif. v. Trichosma 
suavis Ldl. 

—  Dayana Rchb. f. 

—  Dillwynii Hook. 

—  eburnea Rchb. f. 

—  elongata BI. 

—  excavata Läl. 

— extinctoria Oliv. 

—  flava Ldli. 

—  flavescens Ldl. 

—  floribunda Ldi. 

—  fusca BI. 

—  lanata Grif. v. E. flava Ldl. 

— lanicps Rchb. f. v. E. flava 


Po ur 


Evria Myosurus Rchb. f, v. Phreatia 
Ldl. 
—  myristiciformis Hook. 
—  ornata Ldi. 
—  ovata Ladl. 
—  paniculata Ldl. 
—  pauciflora Wight. 
—  polyura Ldi. 
— profusa Ldi. 
—  pusilla Ldl. 
—  reticulata Benth. 
—  rigida BI. 
—  rosea Ldl. 
—  rugosa Ldi. 
—  sphaerochila Ldl. v. E. excavata 
Ldl. 
—  stellata Ldl. v. Tainia Pftz. 
—  stricta Ldi. 
— _ striolata Hort. v. E. rosea Ldl. 
—  suavis Ldl. v. Trichosma suavis 
Ldl. 
— velutina Lodd. 
—  vestita Ldl. 
Eriopsis Ldl. 
—  biloba Ldl. 
—  rutidobulbon Hook. 
—  sceptrum Rchb. f. 
—  Schomburgkii Rchb. f. v. E. 
biloba Ldl. 
Erythrodes B1. v. Physurus L. C. Rich. 
Erythrorchis BI. v. Galeola Lour. 
Esmeralda Rchb. f. 
—  Cathocartii Rchb.f. 
—  Clarkei Rchb. f. 
—  Sanderiana Rchb. f. 
Eucnemis Ldl. v. Govenia Ldl. 
Eulophia R. Br. 
—  Dregeana Ldi. 
—  flava Hook. f. 
—  guineensis Ldl. 
var. purpurata Rchb. f. 
—  Ledieni Stein. v. Eulophidium 
maculatum Pftz. 
—  Mackaiana Ldi. v. Zygopeta- 
lum Mackayi Hook. 
—  maculata Rchb. f. v. Eulophi- 
dium maculatum Pftz. 
—  maxillare Lodd. v. Zygopetalum 
maxillare Lodd. 
—  pulchra Ldi. 
— rostrala Ldi. v. 
rostratum Hook. 
— scripta Ldi. +. 
scripta Pfitz. 
Eulophidium Pftz. 
—  maculatum Pftz, 
Eulophiella Rolfe. 
—  Elisabethae L. Lind. et Rolfe. 
Eulophiopsis Pftz. 
—  scripta Pftz. 
FernandeziaR. etP.v.Lockhartia Hook. 
Fieldia Gaudich. v. Vandopsis Pfitz. 


Zygopetalum 


Eulophiopsis 


Fieldia gigantea Rchb. f. v. Vandopsis 
gigantea Pfitz. 
—  lissochiloides Rchb. f. v. Van- 
dopsis lissochiloides Pfitz. 
Flagellaria aranifera v. Renanthera 
Flos-aëris Rchb. f, 
Foynicaria rostrata BI. v. Camarotis 
rostrata Rchb. f. 
Gabertia Ellisii Gaud. v. Grammangis 
Ellisii Rchb. f. 
Galeandra Ldl. 
—  Batemanii Rolfe. 
—  Baueri Ldl. 
var. nivalis Hort. 
—  Claesii Cogn. 
—  cristata Ldl. v. G. dives Rchb.f. 
—  D'’'Escragnoleana Rchb. f. v. 
G. Devoniana Ldl, 
—  Devoniana Ldl. 
— — var. Delphinae Hort. 
—  dives Rech. f. à 
—  flaveola Rchb. f. v. G. dives 
Rchb. f. 
—  Harveyana Rchb. f. 
—  nivalis Hort. v. G. Baueri Ldl. 
var. nivalis. 
Galeoglossum A. Rich. v. Prescottia 
ce 
Galeola Lour. 
—  altissima Rchb. f. 
Galeottia A. Rich. 
—  Burtii Endr. et Rchb. f. v. 
Huntleya Bat. 
—  fimbriata Ldi. 
—  grandiflora Rich. et Gal. 
—  Meleagris Rich. v. Huntleya Me- 
leagris Ldl, 
—  Wallisii Rich. v. Huntleya Me- 
leagris var. Wallisii Ldl. 
Gastrochilus Don. v. Saccolabium BI. 
Gennaria Parl. v. Plathanthera L. 
C. Rich. 
Geodorum Jacks. 
—  citrinum Jacks. 
—  fucatum Ldi. 
—  pictum Lk. v. Eulophidium ma- 
culatum Pfitz. 
—  purpureum R. Br. 
Georchis Ldl. v. Goodyera R. Br. 
Gersinia Ner. v. Bulbophyllum Thou. 
Ghiesbreghtia À. Rich. et Gal. v. Calan- 
the R. Br. 
Glossaspis Sprgl. v. Habenaria Willd. 
Glossula Ldl. v. Habenaria Willd. 
Gomeza KR. Br. 
—  Barkeri Benth. 
—  crispa K1. et Rchb. f. 
—  planifolia KI. et Rchb. f. 
— recurva R. Br. v. G. planifolia 
K1. et Rchb. f. 
—  tenuiflora Hort. v. Notylia punc- 
tata Ldi. 


a LT Pie 


Gomphostylis Wall. v. Pleione Don. 
Gongora KR. et P. 
— alba Ldi. v. G. quinquenervis R. 


et P. var. 

armeniaca Rchb. f. 

atropurpurea Hook. 

— var. albescens Hort. 

aurantiaca Rchb. f. 

bufonia Ldl. 

— var. major Hort. 

—  leucochila Lem. v. G. quin- 

quenervis R. et P. var. 

cornuta Rchb. f, v. G. arme- 
niaca Rchb. f. 

flaveola Hort. v. G. quinque- 
nervis R. et Pav. 

fulva Hort. v. G. quinquenervis 
R. et Pav. 

galeata Rchb. f. 

Galcottiana Rchb. f. v. G. trun- 
cata Ldl. 

Fenischis Lodd. v. G. odoratis- 
sima Lem. 

leucochila Lem. v. G. quinque- 
nervis R. et P. var. 

Loddigesis Hort. v. G. galeata 
Rchb. f. 

lutea Hort. v. G. quinquenervis 
KR. et Pav. 

luteola Hort. v. G. quinquener- 
vis R. et Pav. 

macrantha Hook. v. Coryanthes 
macrantha Hook. 

maculata Läl. v. G. quinquener- 
vis R. et Pav. 

— var. éricolor Ldl. v. G. tri- 

color Rchb. f. 

nigrita Ldl. 

odoratissima Lem. 

portentosa Lind. et Rchb. f. 

punctata Hort. y. Coryanthes ma- 
culata Hook, var. 

quinquenervis R. et Pav. 

— var. alba Ldi. 

flaveola Hort. 

leucochila Lem. 

lutea Hort. 

nigrita Ldi. 

— — vitellina Hort. 

speciosa Ldäl. v. Coryanthes spe- 
ciosa Hook. 

tricolor Rchb. f. 

truncata Ldl. 

— var. Donkelariana Hort. 

véridi-purpurez Hook. v. Cir- 
rhaea Loddigesii Rchb. f. 

vitellina Hort. v. G. quinquener- 
vis R. et Pav. var. 


Gonogona Lk. v. Goodyera R. Br. 
Goodyera R. Br. 


cordata Hort. v. Anœctochilus 
regalis BL. var. 


Goodyera Dawsonii Hort. v. Haemaria 


discolor Ldl. var. 

discolor Ker. v. Haemaria dis- 
color Ldi. 

javanica Hort. v. Macodes 
Hook. f. 

macrantha Maxim. 

— Var. luteo-marginata Maxim. 

Ordiana Hort. v. Haemaria dis- 
color Läl. var. Ordiana Will. 

icta Hort. v. Physurus pictus 

procera Hook. 

pubescens R. Br. 

— Var. minor Sw. 

repens L.. 

Rollissonii Hort. v. Haemaria 
Rollissonii Lind. 

rubrovenia Boxall. 

tessellata Lodd. v. G. pubescens 
R. Br. var. minor Sw. 

velutina Maxim. 


Govenia Ldl. 


deliciosa Rchb. f. 
fasciata Ldl. 
lagenophora Ldl. 
liliacea Ldl. 
sulphurea Rchb. f, 


Grammangis Rchb. f. 


Ellisii Rchb. f. 
Hauttoni Benth. et Hook. 


Grammatophyllum Bl. 


Ellisii Ldi. v. 
Rchb. f. 

Fenzlianam Rchb. f. 

— var. Measuresianum Veitch. 

Finlaysonianum Läl. v. Brom- 
headia palustris Läl. 

Guilelmi II Kränzl. 

Measuresianum Rchb. f. v. G. 
Fenzlianum Rchb. f. var. 

multiflorum Ldl. 

— var. tigrinuom Ldl. 

Sesgerianum Rchb.f. v.G. Fenz- 
lianum Rchb. f, var. Measure- 
sianum Veitch. 

speciosum BI. 


Grammangis 


Gunnia Ldl. v. Sarcochilus R, Br. 
Gussonesa À. Rich v. Mystacidium Läl, 
Gyas humilis Salisb. v. Bletilla hyacin- 


Gymn 


thina Rchb. f. 
verecunda Salisb. v. Bletia vere- 
cunda R. Br. 


adenia R. Br. 


albida Rich. 

ambigua G. Beck v. G. inter- 
media Peterm. 

brachystachys Wettst. v. Nigri- 
tella brachystachys Kern. 

conopsea R, Br. 

— var. densiflora Dietr. 

ornithis Jacq. 


— 436 — 


Gymnadenia densiflora Dietr. v. G. co- 
nopsea R. Br. var. 
—  fragrans Saut. v. Nigritella sua- 
veolens Koch. 
—  intermedia Peterm. 
—  nigra Ait. v. Nigritella nigra 
Rchb. f. 
—  odoratissima A. Rich. 
—  vubra Wettst, v. Nigritella nigra 
Rchb. f. v. 
—  suaveolens Wettst. v. Nigritella 
suaveolens Koch. 
—  viridis Rich. v. Cœloglossum 
viride Hartm. 
Gyrostachis Pers. v. Spiranthes L. C. 
Rich. 
Habenaria Willd. 
—  albida R. Br. v. Gymnadenia 
Rich. 
— bifolia R. Br. v. Platanthera 
bifolia Rchb. 
—  BonateaRchb. f. 
—  chlorantha Babingt. v. Platan- 
thera Rich. 
—  ciliaris R. Br. v. Platanthera 
Ldl. 
—  cinnabarina Rolfe. 
—  cyistata R. Br. v. Platanthera 


Ldl. 

—  fimbriata R. Br. v. Platanthera 
Ldl. 

—  gigantea Don v. H. Susannae 
R. Br. 


—  militaris Rchb. f. 
—  speciosa Hort. v. H. Bonatea 
Rchb. f. 
—  Susannae KR. Br. 
Haemaria Ldi. 

—  Dawsontana Rchb. f. v. H. dis- 

color Ldi. var. 

—  discolor Ldl. 

—  — var, Dawsoniana Rchb, f. 

— — —  Ordiana Will. 

—  Otletae Rolfe. 

—  Rollissonii Lind. 

—  rubrovenia Rchb. f. 
Haematorchis BI. v. Galeola Lour. 
Haplochilus regius Endl. v. Zeuxine 

regia Ldi. 

Hartwegia Ldi. 

—  comosa Ldi. 

— — var. picta Ldi. 

— — —  eximia Rchb.f. 

—  purpurea Ldl. 

Helcia Ldl. 

—  sanguinolenta Ldil. 

Helleborine Pers. v. Serapias L. 
Herminium L. 

—  monorchis L. 

Hetevotaxis Ldl,v. MaxillariaR. etPav. 
Himantoglossum Spreng. 
—  hircinum Spreng. 


Hippoglossum Breda v. Cirrhopetalum 
Ldl. 


Hormidium pygmaeum Ldl, v. Epiden- 
drum pygmaeum Hook. 
Houlletia A. Brgn. 
—  Brocklehurstiana Ldl. 
— — var. maxima Hort. 
—  chrysantha Lind. et Andr. v. H. 
Wallisii Lind. et Rchb. f. 
—  Lansbergii Lind. et Rchb. f. 
—  Lowiana Rchb. f. 
— odoratissima Ldl. 
—  — var. antioquiensis Lind. 
— — —  xanthina Hort. 
—  picta Lind. et Rchb. f. 
—  stapeliaeflora Brongn. v. H. sta- 
peloides Brongn. 
—  stapeloides A. Brongn. 
—  tigrina Lind. 
— vittata Ldl. v. Polycycnis vittata 
Rchb. f. 
—  Wallisii Lind. et Rchb. f. 
Humboldtia KR. et P. v. Pleurothallis 
R. Br. 
Huntleya Batem. 
—  aromatica Batem, v. Warscewic- 
zella aromatica Rchb. f. 
—  Burtii Bat. 
— — var. major Rchb. f. 
— — — Wallisii Hook. 
—  candida Bat. v. Warscewiczella 
candida Rchb. f. 
—  cerina Bat. v. Pescalorea cerina 
RCRDEE 
—  grandiflora Bat. v. 
grandiflora Rich. 
—  marginata Bat. v. Warscewic- 
zella marginata Rchb. f. 
—  Meleagris Ldl. 
—  yadians Hook. v. Warscewiczella 
radians Rchb. f. 
—  violacea Bat. v. Bollea violacea 
Rchb. f. 
—  Wallisii Bat. v. H. Burtii Bat. 
var. 
Hypodematium À. Rich. v. Lissochilus 
RerBT: 
Iantha pallidiflora Hook. v. Ionopsis 
utricularioides Ldl. 
Ibidium Salisb. v. Spiranthes A. Rich. 
Ionopsis H. B. K. 
—  paniculata Ldi. 
— — var. grandiflora Hort. 
— — — maxima Hort. Lind. 
—  utricularioides Ldl. 
Ionorchis abortiva G. Beck v. Limo- 
dorum abortivum Sw. 
Ipsea Ldl. 
—  speciosa Ldi. 
—  Thomsoniana Pftz. 
Ividorchis gigantea B1. v. Cymbidium 
giganteum Wall. 


Galeottia 


ap, Mr 


Laelia anceps var. Williamsiana Sander. 


Isochilus R. Br. 
— linearis R. Br. 
Kefersteinia Rchb. £. 
—  graminea Rchb. f. 
Kegelia Rchb. f. 
—  Houtteana Rchb. f. 
Kœællensteinia Rchb. f. 
—  tono0ptera Rchb. f. v. Aganisia 
ionoptera Nickels. 
—  Kelineriana Rchb. f. 
Lacaena Ldl. 
—  bicolor Ldi. 
Laelia Ldl, 
—  acuminata Ldil. v. L, rubescens 
Ldl. 
— alba Hort. 
— albida Bat. 
var. bella Hort. 
Marianae Warner. 
rosea Hort. 
salmonea Hort. v. var. 
Marianae Warn. 
Stobartii Hort. 
sulphurea Rchb. f. 
superba Hort. 
— Tuckeri Hort. 
—  at#anda Rchb. f. v. Laeliocatt- 
leya Rolfe. 
—  Amesiana Rchb. f. v. Laelio- 
cattleya Rolfe. 
—  anceps Ldl(n), 
var. alba Rchb. f, 
Barkeriana Ldl. 
—  blanda Hort. v. var. 
alba Rchb. f. 
Colberti Hort. 
— —  Dawsoni Anderson. 
delicata Hort. 
grandifiora Will. 
Hilliana Rchb. f. 
Hyeana L. Lind. 
Movrado Hort. v. var. 
grandiflora Rchb. f. 
oculata Hort. 
—  Percivalliana Rchb. f. 
rosea Rchb. f. 
—  Sanderiana Hort, 
—  Schroederiana Hort. 
— — — Scottiana Will. 
stella Rchb, f. 
superba Hort. v. var. 
grandiflora Rchb. f, 
Veitchiana Rchb. f. 
vestalis Rchb. f. 
vérginalis v. var. alba 
Rchb, f. 


Aynoldiana Hort.Sand.v.Laelio- 
cattleya Rolfe. 

—  Rchb. f. v. L. Gouldiana 

Rchb. f. 

atrorubens Bachk. v. L. autum- 
nalis Ld]. var. 

aurantiaca Ladl. 

autumnalis Ldl. 

— var. atrorubens Backh. 

rosea Hort, 

venusta Hort. 

xanthotropis Rchb, f. 

Batemaniana Rchb. f. v. So- 
phrocattleya Rolfe. 

Behrensiana Hort. v. 
cattleya Rolfe. 

bella Rchb. f. v. Laeliocattleya 
Rolfe, 

Boothiana Rchb. f. v. L. lobata 
Ldi. 

Brymeriana Hort. v. Cattleya 
Rchb. f. 

Brysiana Lem. v. L. purpurata 
Ldl. var. 

callistoglossa Rchb. f. +. Laelio- 
cattleya Rolfe, 

caloglossa Rchb. f. v. Laelio- 
cattleya Rolfe, 

Canhammiana Rchb. f, v. Lae- 
liocattleya, 

caulescens Hook. v. L. flava Ldl. 

cinnabarina Batem. 

— var. crispilabia À. Rich. 

crispa Rchb. f. 

— var. Buchananiana Moore. 

delicatissima Hort. Will. 

grandiflora Hort.v.var, 
Buchananiana Moore. 

purpurea Will. 

reflexa Hort, 

superba Hort. 

crispilabia Warn. v. L. cinna- 
barina Bat. var. 

Dayana Rchb. f. v. L. pumila 
Rchb. f. var. 

delicata O'Brien v. L. purpurata 
var. Schrœderi. 

dellense Rchb, f. 

Digbyana Bnth. et Hook. 

domingensis Pfitz. 

Dominyana Rchb. f. v. Laelio- 
cattleya Rolfe. 

— var. r0sea Veitch. v. Laelio- 

cattleya Dominyana var. 
Dormanniana Rchb. f. 


Laelio- 


TE À LE 


(1) Il en existe de nombreuses variétés : 
connues ; de fort nombreux hybrides bi-généri 


nous citons quelques-unes des plus 
ques sont souvent mis en vente sous le 


nom de Laelia : les plus remarquables seront renseignés au tableau des hybrides au 


mot Laeliocattleya Rolfe. 


30 


nu (us 
Laelia monophylla N. E. Br. v. Octa- 


Laelïa elegans Rchb. f. 


— var. alba Will. 
Blenheimense Will. 
Bluntii Low. 
Broomeana O'Brien. 
Brysiana Hort. v. L. 
purpurata Ld!. var. 
gigantea Warner. 
— — grandiflora Ldl. v.var. 
gigantea Warner. 
Houtteana Rchb. f. 
irrorata Rchb. f. 
Leeana Will. 
Measuresiana Hort. v. 
L. X Measuresiana 
Hort. Will. 
Morreniana Rchb. f. 
prasiata Rchb. f. 
Schilleriana Rchb. f, 
Scottiana Rchb, f. 
Statteriana Rchb. f. 
Stelzneriana Rchb. f. 
Turneri Hort. 
Warneri Hort. Will. 


eyubescens Hort. v. L. rubescens 
Ldl. 

exontensis Hort. v. Laeliocattleya 
Rolfe. 

felix Rchb. f. v. Laeliocattleya. 

flava Ldl. 

furfuracea Ldl. 

gigantea Hort. v. 
Rchb. f. var. 

glauca Benth. et Hook. 

Gottoiana Rchb. f. v. Laelio- 
cattleya Rolfe. 

Gouldiana Rchb. f. 

grandiflora Ldl. v. L. elegans 
Rchb. f. var. gigantea Hort. 

grandis Ldl. 

— var. tenebrosa Hort. v. L. 

tenebrosa Rolfe. 

harpophylla Rchb. f. 

intricata Hort. v. L. elegans 
Rchb. f. var. Wolstenholmiae 
Rchb. f. 

irroyata Rchb. f. v. L. elegans 
Rchb. f. var. 

— var. Scottiana Rchb. f, v. 

L. elegans Rchb. f. var. 

Jongheana Rchb. f. 

Leeana Rchb. f. 

lilacina Hort. 

Lindleyana Hook. 

lobata Rchb. f. 

— var. superba Hort. 

Lucasiana Rolfe. 

majalis Ldi. 

marginata Paxt. v. L. pumila 
Rchb. f. 


L. elegans 


Wolstenholmiae Rchb.f. 


desmia monophylla Benth. 
peduncularis Ldl. v. L. rube- 
scens Ldi. 

Perrinii Ldl. 

— var. irrorata Rchb. f. 

nivea Rchb. f. 

Philbrickiania Rchb. f. v. Lae- 
liocattleya. 

Pinelii Ldl. v. L. pumila Rchb.f. 

praestans Rchb. f, v. L. pumila 
Rchb. f. var. 

pubescens Lem. 

pumila Rchb. f. 

— var. alba Hort. Bull. 

Dayana Rchb. f. 

marginata Ldl. 

mirabilis E. Morr. 

praestans Veitch. 

spectabilis Rchb. f. 

superba Hort. 

purpurata Ldi. 

— Var. alb4 HOft: 

atropurpurea Will. 

— Aurora F. Rag. 

Blenheimense Will. 

—  Brysiana Lem. 

discolor Rolfe, 

—  fastuosa Lind, 

—  Nelisii Lem. 

— —  praetexta Rchb. f. 

rosea Regel. 

—  Russelliana Hort. 

—  Schroederi Will. et 

Moore. 

— —  Williamsii Hort. 

RivieriCarr.v. L. lobata Rchb.f. 

rubescens Ldi, 

—. var. acuminata Ldi. 

— — rosea Hort. 

rupestris Ldl, 

Russeliana Hort. v. L. purpurata 
Ladl. var. 

Schilleriana Rchb.f. v. L, ele- 
gans Rchb. f. var. Schille- 
riana Rchb. f. 

Schrocderiana Will. et Moore v. 
L. purpurata LdI. var. 

stella Hort. v. L. anceps Ldi. 
var. 

Stelzneriana Rchb.f. v. L. ele- 
gans Rchb. f. var. 

superbiens Ldl. 

— var. Quesneliana Wili. 

tenebrosa Rolfe. 

Tuvneri Warner v. L. elegans 
Rchb. f, var. 

Veitchiana Rchb. f. v. Laelio- 
cattleya, 

violacea Ldl. v. L. purpurata 
Ladl. 


D 


ER M 


Laelia virens Hort. v. L. elegans Rchb, 
f. var. prasiata Rchb. f. 
—  virens Ldl. 
— virginalis Hort. v. L. anceps 
Ldl. var. alba Rchb. f. 
— Warneri Will v. L. elegans 
Rchb. f. var. 
—  Wolstenholmiae Rchb. f. v. L. 
elegans Rchb. f. var. 
—  Wyattiana Rchb. f. 
—  xanthina Ldl. 
—  Zenobia Hort. v. Laeliocattleya 
Rolfe. 
Laeliopsis Ldl. v. Laelia Ldl. - 
—  domingensis Ldl. v. Laelia do- 
mingensis Pftz. 
Lanium Benth. v. Epidendrum L. 
Leptotes Ldi. 
— _ bicolor Ldl. 
— — var. brevis Rolfe. 
— — — concolor Hort. 
— — — glaucophylla Hort. v. 
var. serrulata. 
— — — serrulata Rchb. f. 
— _ serrulaia Ldl. v. L. bicolor Ldi. 


Var. 
Leucohyle Klotzsch v. Trichopilia Ldl. 
Lichenora Wight v. Eria Ldl. 
Limatodes Ldl. 
—  rosea Ldl. 
Limodorum Sw. 
—  abortivum Sw. 
—  callosum BI, v. Phajus callosus 
Ladl. 
— _ flavum BI. v. Phajus flavus Ldl. 
—  Incarvillei B1. v. Phajus Blumei 
Ldl. 
—  Tankervilliae Aït. v. Phajus 
Tankervilliae BI. 
—  tuberculosum Thou. v. Phajus 
tuberculosus BI. 
Lindblomia Fr. v. Platanthera L. C. 
Rich. 
Liparis L. C. Rich. 
—  aitropurpurea Hort. v. Microsty- 
lis purpurea Ldl. 
—  elegantissima Hort. v. Micros- 
tylis calophylla Rchÿ. f, 
— lilüfolia Rich. 
—  Laæselii Rich. v. Sturmia Loese- 
lii Rchb. f. 
—  pendula LAdl.v.Certichis pendula 
Pfitz. 
Lissochilus R. Br. 
—  Alexandri Rchb. f. 
—  giganteus Welw. 
—  Horsfallii Bat. 
—  Krebsii Rchb. f. 
— — var. purpuratus Ridley. 
—  roseus Ldi. 
—  speciosus R. Br. 
Listera R. Br. 


Listera cordata R. Br. 
—  ovata R. Br. 
Listrostachys Rchb. f. 
—  arcuata Rchb. f. 
—  caudata Rchb. f. 
—  pellucida Rchb. f. 
—  pertusa Rchb. f. 
Lockhartia Hook. 
—  lunifera Rchb. f. 
Loroglossum L. C. Rich. v. Himanto- 
glossum Spreng. 
— _ anthropophorum Rich. v. Aceras 
anthropophora R. Br. 
—  hircinum Rich. v. Himantoglos- 
sum hircinum Sprgl. 
Ludisia discolor BI. v. Haemaria disco- 
Jor Ldi. 
Luddemannia Pescatorei Rchb. f. v. 
Acineta Pescatorei Ldl. 
Luisia Gaudich. 
—  alpina Ldl. v. Vanda alpina Ldl. 
—  Amesiana Rolfe 
—  antennifera BI. 
—  platyglossa Rchb. f. v. L. tereti- 
folia Gaudich. 
—  Psyche Rchb. f. 
—  teretifolia Gaudich. 
—  volucris Ldl. 
Lycaste Ldl. 
— alba Hort. v. L. Skinneri Ldl. 
Var. 
—  albida Hort. v. L. Skinneri Ldl. 
var. delicatissima. 
—  amabilis Hort. v. L. Skinneri 
Ldi. var. 
—  Amesiana Rolfe. 
—  aromatica Ldl. 
—  — var. punctata Hort. 
—  balsamea Hort. v. L. cruenta 
Ldl. 
—  Barringtoniae Ldl. 
— — var. grandiflora Hook. v. 
L. mesochlaena Rchb. f. 
—  eandida Hort. v. Bifreraria Har- 
risoniae LdI. var. alba Lodd. 
—  candida Ldl. 
—  ciliata Rchb. f. v. L. Barring- 
toniae Ladl. 
—  ciliata Veitch. 
—  cinnabarina Rolfe. 
—  ciérina Hort. angl. v. Bifrenaria 
Harrisoniae Ldl. var. 
—  Cobbiana Hort. v. L.lanipes Ldl. 
—  Cobbiana Rchb. f. 
—  consobrina Rchb. f. 
—  costata Ldi. 
—  costata Regel v. L. mesochlaena 
Rchb. f. 
—  cruenta Ldl. 
—  Denningiana Rchb. f. 
—  Deppei Läl. 
— — var. major Hort. 


ml 


Lycaste Deppei var. pallida Hort. 
— —  —  punctatissima Rchb. f. 
—  fulvescens Hook. 
—  gigantea Ldl. 
—  Hadweniit Ldi. v. Scuticaria 
Hadwenii Bnth. 
—  Harrisoniae Hort. v. Bifrenaria 
Harrisoniae Ldi. 
—  inodora Hort, v. Bifrenaria ino- 
dora Ldl. 
—  lanipes Ldi. 
—  lasioglossa Rch. f. 
—  Lawrvenceana Ldi. v. Bifrenaria 
Harrisoniae Ldi. var. alba. 
— leucantha KI. 
—  Linguella Rchb. f 
—  Luciani Van Imsch. et Cogn. 
—  macrobuibon Ldl. 
— — var. Youngi Rolfe. 
—  macrophylla Ldi.v. L.plana Ldi, 
—  Mastersiana Sand, 
—  mesochlaena Rchb. f. 
—  plana Ldl. 
— — var. Measuresiana Will. 
—  yacemosa Ldl.v. Bifrenaria race- 
mosa Ldl. 
—  Rossiana Rolfe. 
—  Schilleriana Rchb. f. 
— — var. Lehmanni Regel. 
—  Skinneri Ldl. 
var Alba ont 
aa ble 
et Armeniaca Hoft. oand, 
a delicatissiMmaN Van, 
— — —. gloriosa Will. 
— — — magnifica Hort. 
— — — nigro-rubra Hort. 
— — — picturata Warn. 
— — — purpurata Warn, 
— — — purpurea Hort. 
— — — Reginae Hort. v. L.S,. 
var.nigro-rubra Hort. 
—"— -— “‘rosea Hort. Will. 
— — — roseo-purpurea Hort. 
Will, 
— — — superba Moore. 
a —  vestalis HOrt. Wall. 
— — — virginalis Hort. v. L. 
S. var. alba Hort. 
— — —  Youngii Hort. 
—  Smeeana Rchb. f. 
—  tetragona Ldi. 
—  virginalis Hort. v. L. Skinneri 
Ldi. v. alba Hort. 
Lyraea Ldl. v. Bulbophyllum Thou. 
Macodes BI. 
—  javanica Hook. 


—  Petola BI. 
Macrocentron Philippi v. Habenaria 
Willd. 
Macrochilus Knowl. et Westc. v. Mil- 
tonia Ldl. 


Macrochilus Fryanus Knowl. v. Mil- 
tonia spectabilis Ldl, 
Macroplectrum Pfitz. 
—  sesquipedale Pfitz. 
Maelenia Dum. v. Cattleya Ldl. 
Malachadenia Ldl. v. Bulbophyllum 
Thou. C 
Malaxis Sw. 
—  paludosa Sw. 
—  Parthoni Morr. v. Microstylis 
histionantha Lk, et O.. 
Masdevallia R. et P. 
—  acrochordonia Rchb. f. v. M. 
Ephippium Rchb. f, 
—  aequiloba Rgl. v. M. civilis 
Rchb. f. 
—  amabilis Rchb. f. et Warsc. 
— — var, grandiflora Hort. 
—  —  — lineata Lind, et André. 
—  Armini Rchb. f. 
— astuta Rchb. f. 
— — var. Gaskelliana Rchb, f. 
— _ atyopurpurea Ldi. v. Cryptopho- 
ranthus atropurpureus Rolfe, 
—  Backhouseana Rchb. f. v. M. 
Chimaera Rchb. f. var. 
—  Barlaeana Rchb, f, 
— bella Rchb. f. 
—  Benedicti Rchb. f. v. M. Hout- 
teana Rchb. f. 
—  Boddaertii Linden v. M, ignaea 
Rchb. f. var. 
—  Brückmilleris Hort. v. M. co- 
riacea Ldl. 
—  Burbidgeana Rolfe 
—  Calenderi Hort. v. M. coccinea 
Lind. var. 
—  calura Rchb. f. 
—  campyloglossa Rech, f. 
—  candida Karst. et Klotzsch. v, 
M. tovarensis Rchb. f. 
—  Carderi Rchb. f. 
—  caudata Ldi. 
—  caudataLdl.var. Shuttleworthii 
Rchb. f. v. M. Shuttleworthii 
Rchb.f. 
—  caudata Ldi. var. xanthocorys 
Rchb. f. v. M. Shuttleworthii 
Rchb. f. var. 
—  Cayennensis Rchb. f, v. M. co- 
riacea Ldi. 
—  Chestertonii Rchb. f. 
—  Chimaera Hort. non Rchb. f, v. 
M. nycterina Rchb. f. 
—  Chimaera Rchb. f. 
—“— var. aurantiaca HoOrt, 
— — —  Backhouseana Rchb. f. 
— — —  Gorgona Veitch. 
—  —  Roezlii Veitch, 
— — —  rubra Will. 
— —  — senilis Veitch. 
—  —  — severa Veitch. 


Masdevallia Chimaera var. stupenda 


Rchb. f. 

Wallisii Hook. 

Winaiana Veitch. 

civilis Rchb. f. 

coccinea Lind. 

— var. conchiflora Rchb. f£. 

Harryana Rchb. f, 

armeniaca Will. 

atrosanguinez: Wil- 
liams. 

cœærulescens Will. 

decora Will. 

Denisoniana 
Rchb. f. 

—  grandiflora Will. 

Houtfeana Hort. 
v. M. Houtteana 
Rchb. f. 

—  laeta Rchb. £. 

lateritia Hort. 

— lilacina Will. 

—  macrantha Hort. 
v. M. c. H. var. 
grandiflora Will. 

miniata Will. et 
Moore. 

purpurez Hort. 
sanguinea Hort. 
v. M. c. H. var. 
Denisoniana 
Rchb. f. 
splendens Hort. 
tricolor Hort. 

van Houtéei Hort. 
v. M. Houtteana 
Rchb. f. 

versicolor Moore. 

violacea Hort. +. 
M. c. H. lilacina 
Will. 

Lindeni André. 

grandiflora Hort. 

coccinea Regel non Ldl. y. M. 
ignea Rchb. f, 

Colibri Lem. v. M. Ephippium 
Rchb. f. 

coriacea Ldl. 

corniculat: Rchb. f. 

— Var. inflata Veitch. 

Crossii Hort.v.M. racemosa Ldl. 

cucullata Läl. 

Culex Hort. v. Pleurothallis 
Barberiana Rchb, f. 

Davisii Rchb. f. 

Dayana Rchb. f. y. Cryptopho- 
ranthus Dayanus Rolfe. 

demissa Rchb. £, 

Denisoniana Rchb. f. v. M. 
coccinea Lind, var. 

elephanticeps Rchb. et Warsc. 


— Var. pachysepala Rchb. f, 


Ill 


Masdevallia Ephippium Rchb. f, 


erythrochaete Rchb. f. 

Estradae Rchb. f. 

— var. delicata Hort. 

xanthina Rchb.f.v.M. 
xanthina Rchb. f. 

fenestrata Läl. v. Cryptopho- 
ranthus atropurpureus Rolfe. 

floribunda Ldl. 

Galeottiana À. Rich. v. M. flo- 
ribunda Ldi. 

Gargantua Rchb. £. v. M. Moo- 
reana Rchb. f. var. 

Gaskelliana Rchb. f. v. M. as- 
tata Rchb. f. var. 

germmata Rchb. f. 

gibberosa Rchb. f. 

Gorgona Hort: v. M. Chimaera 
Rchb. f. var. 

gracilent: Rchb. f. 

Harryans Rchb. f. v. M. cnc- 
cinea Lind. var. 

hieroglyphica Rchb. f. 

Hincksiana Rchb. f. 

Houtteana Rchb. f. 

ignea Rchb. f. 

— Var. aurantiaca Will. 

Boddaertii Lind. 

citrina Hort. 

coccinea Hort. 

grandiflora Will. 

Hobartiÿ Hort. 

magnifica Hort. v. M. 
ignea Rchb. f. var. 
grandiflora Will. 

Marshalli Rchb. f. 

Massangeana Will. 

splendens Hort. 

inaequalis Rchb. f. 

snflata Rchb. £. v. M. cornicu- 
lata Rchb. var. 

infracta Ldl. 

— var. purpurea Rchb. f. 

ionocharis Rchb. f. 

Kienastiana Hort. v. Pleuro- 
thallis Roezlli Rchb. f. 

leontoglossa Rchb. f. 

Lindeni André v. M. coccinea 
Lind. var, 

longicaudata Lem.v.M.infracta 
Ldl 


Lowii Rchb. f. 

ladibund: Rchb,. f. 
macrura Rchb. f. 

maculat: KI. et Karst. 

— Var. flava Veiïtch, 
saperba Hort, 
melanopus Rchb, f. 
militaris Rchb. f. et Warsc. 
Mooreana Rchb. f. 

— var. Gargantua Rchb. f. 
musçcosa Rchb. f, 


me 


Masdevallia #yriostigma Morr. v. M. 


floribunda Ladl. 

nycterina Rchb. f. 

ochthodes Rchb. f. v. Scaphose- 
palum ochthodes Pftz. 

pachyantha Rchb. f. 

pachysepala Rchb. f. v. M. ele- 
phanticeps Rchb. f. var, 

Parlatoreana Rchb. f. 

Peristeria Rchb. f. 

platyglossa Rchb. f. 

polyantha Ldl. v. M. Schlimii 
Lind. 

polysticta Hook. f. non Rchb. f. 
v. M. melanopus Rchb. f. 

polysticta Rchb. f. 

— var. crassicaudata Rchb. f. 

psittacina Rchb. f. v. M. Hout- 
teana Rchb. f. 

racemosa Ldl. 

radiosa Rchb. f. 

Reichenbachiana Endres. 

Ræzlii Rchb. f. v. M. Chimaera 
Rchb. f. var. 

Rolfeana Sander. 

rosea LdiI. 

Schlimii Lind. 

senilis Rchb, f. v. M. Chimaera 
Rchb. f. var. 

severa Rchb, f. v. M. Chimaera 
Rchb. f. var. 

Shuttleworthii Rchb. f. 

— var. xanthocorys Rchb. f. 

simula Rchb. f. 

spectrum Rchb. f. 

splendida Rchb. f. 

— var. Parlatoreana Rchb. f. 

tovarensis Rchb. f. 

triangularis Ldl. 

triaristella Rchb. f. 

trichaete Rchb. f, v. M. gem- 
mata Rchb. f. 

tridactylites Rch. f. 

Trochilus Lind. et André w. 
M. Ephippium Rchb. f. 

troglodytes E. Morr. 

Veitchiana Rchb. f. 

— var. grandiflora Will. 

velifera Rchb. f. 

veyrucosa Rchb. f. v. Scaphose- 
palum verrucosum Pftz. 

Vespertilio Rchb. f. 

Wageneriana Linden. 

Wallisii Rchb. f. v. M. Chi- 
maera Rchb. f, var. 

Wendlandiana Rchb. f. 

Winniana Rchb. f. v. M. Chi- 
maera Rchb. f. var. 

xanthina Rchb. f. 

xanthocorys Rchb.f.v. M. Shutt- 
leworthii Rchb. f. var. 


Masdevallia xanthodactyla Rchb. f, 


v. M. melanopus, 


Maxillaria KR. et P. 


acicularis Herb. 

acutipetala Hook. 

anatomorum Rchb. f. 

aromatica Grah. v. Lycaste aro- 
matica Ldli. 

atyopurpurea Lodd. v. Bifrena- 
ria atropurpurea Ldi. 

aureofulva Hook. v. Bifrenaria 
aureo-fulva Ldl. 

barbata West. v. Bifrenaria Har- 
risoniae LdI. var. vitellina. 

Barringtoniae Lodd. v. Lycaste 
Barringtoniae Ldl. 

Brocklehurstiana Ladl. v. Houl- 
letia Brocklehurstiana Ldl. 

callichroma Rchb. f. 

Camaridii Lodd. v. Camari- 
dium ochroleucum Ldl. 

ciliata R. et P. v. Lycaste ciliata 
Veitch. 

cityina Don. v. Promenaea ci- 
trina Ldl. 

coccinea Hortt. v.M.variabilis Bat. 

Colleyi Batem. v. Batemania Col- 
leyi Ldi. 

costata Ldl. v. Lycaste costata 
dl: 

cristata Ldl. v. Paphinia cris- 
tata Ldl. 

crocea Lidl. 

cruenta Ldl. v. Lycaste cruenta 
Ladl, 

cucullata Ldl. 

cyanocheile Hffmsgg v. Colax 
viridis Rchb. f. 

deflexa Ldl. v. M. marginata F21. 

densa Ldi. v. Ornithidium den- 
sum Rchb. f. 

Deppei Lodd. v. Lycaste Deppei 
Lal. 

discolor Lodd. v. Warscewiczella 
Wendlandi Rchb. f. var. 

eburnea Ldl. v. M. grandiflora 
Ldl. 

fucata Hort. v. M. rufescens Ldl. 

fucata Rchb. f. 

— var. Hübschii Veitch. 

galeataLodd. v. Gongora galeata 
Rchb. f. 

grandiflora Ldi. 

— var. Amesiana Hort. 

Haryvisoniae Ldl. v. Bifrenaria 
Harrisoniae Rchb. f. 

Henchmanni Hook. v. M. varia- 
bilis Bat. 

Heynderyxii Morr. v. Lycaste 
gigantea Ldi. 

Houtteana Rchb. f. 


patrie à LUE 
Maxillaria Häübschii Rchb. f. v. M. 


fucata Rchb. f. var. 
imbricata Ldl. v. Ornithidium 
densum Rchb. f. 

jugosa Ldl. v. Colax jugosus 
Ldl. 

Kalbreyeri Rchb. f. v. M. ve- 
nusta Lind. et Rchb. f. 

Kimballiana Hort. v. M. prae- 
stans Rchb. f. 

lanipes Hort. v. Lycaste lanipes 
Ldl. 

Lawrenceana Hort. v. Bifrenaria 
Harrisoniae Ldl. var. alba 
Lodd, 

Lehmanni Rchb. f. v. M. gran- 
diflora Ldi. 

lepidota Ldi. 

leptosepala Hook. v. M. setigera 
Ldl. 

Lindeniae Cogn. 

longisepala Rolfe, 

luteo-alba Ldi. 

— var. Turneri Veitch. 

lyncea Hook.v. Stanhopealyncea 
Bat. 

macrobulbon Hook. v. Lycaste 
macrobulbon Ldi. 

macrophylla P.et E, v. Lycaste 
plana Ldi. 

marginata Fz1. 

mirabilis Cogn. 

nigrescens Ldi. 

ochroleuca Lodd., v. Camaridium 
ochroleucum Ldi. 

pallidiflora Hook. v. Xylobium 
pallidiflorum Pftz. 

pantherina Hort. v. M. margi- 
nata Fz1. 

Parkeri Hook. 

picta Ld. 

— var. major Hort. 

placanthera Ldl. v. Colax viridis 
Ldi. var. 

porphyrostele Rchb. f, 

praestans Rchb. f. 

pubigera Lodd. v. 
Harrisoniae Ldl, 

punctata Lodd. 

punctulata KI. v. M. marginata 
Fenzl. 

vacemosa Hook. v. Bifrenaria 
racemosa Ldl. 

Rollissonii Ld]. v. Promenaea 
Rollisonii Ldl, 

yubrofusca Hort. v. M. nigres- 
cens Ldl, 

rufescens LdI. 

Sanderiana Rchb. f. 

scabrilinguis Hort. v. Xylobium 
squalens Ldi. 

setigera Ldi. 


Bifrenaria 


Maxillaria Skinnert Batem. v. Lycaste 

Skinneri Ldl. 

—  splendens Poepp. et End. 

—  squalens Hook. v. Xylobium 
squalens Ldi. 

—  stapelioides Ldi. v. Promenaea 
stapelioides Ldi. 

—  Sfeelii Hook. v.Scuticaria Steelei 
Ldi. 

—  striata Rolfe. 

—  sulfurina Ldl. 

—  tenuifolia Ldi. 

—  tetragona Ldl. v. Lycaste tetra- 


gona Ldi. 

— tricoloy Ldl. v. M. marginata 
F2z1. 

—  Tuyneri Hort. v. M. luteo-alba 
Ldi. var. 


—  variabilis Batem. 
var. lutea Hort. 
unipunctata Ldl, 
—  venusta Lind. et Rchb. f, 
var. superba Hort. 
—  virginalis Hort. v. Lycaste Skin- 
neri Ldi. var. alba. 
—  yividis Ldi. v. Colax viridis 
Rchb. f. 
—  yitellina Ldi. v. Bifrenaria Har- 
risoniae Ldi. var. 
—  Warreana Lodd, v. Warrea tri- 
color Lidl. 
— xanthina Ldi. v. 
xanthina Ldi. 
Mecosa BI. v. Platanthera L. C. Rich. 
Megaclinium Ldl, 
= /Buio Ldl: 
—  colubrinum Rchb, f. 
—  falcatum Ldi. 
— maximum Ldi. 
—  melanorrhachis Rchb. f, 
— oxypterum Ldl. 
—  purpuratum Rchb. f, 
—  velutinum Ldi. 
Meiracyllium Rchb. f. 
—  gemma Rchb. f. 
Mesoclastes Ldil. v. Luisia Gaud,. 
Mesospinidium aurantiacum Rchb. f. 
v. Ada aurantiaca Ldl, 
—  yoseum Rehb. f. v. Cochlioda 
rosea Benth. 
—  sanguineum Rchb. f, v. Coch- 
lioda sanguinea Benth. 
—  vulcanicum KRchb. f. v. Coch- 
lioda vulcanica Benth. 
Microchilus pictus Morr. v. Physurus 
pictus Ldl. 
Microcælia Ldi. v. Mystacidium Ldl. 
Micropera Dalz. v. Sarcochilus R. Br. 
Microstylis Nutt. 
—  calophylla Rchb, f, 
—  chlorophrys Rchb. f. 
—  discolor Ldi. 


Promenaea 


Milton 


= A 


Microstylis elegantissima Hort. v. M. 


calophylla Rchb. f, 

histionantha Lk. et O. 

javanica Rchb,. f. 

Lowii Rchb. f. 

metallica Rchb. f. 

monophyllos Ldl,. 

Parthoni Rchb. f. v. M. histio- 
nantha Lk. et O. 

purpurea Ldl. 

1a die 

anceps Ldl. 

bicolor Hort. v. M. spectabilis 
Ldl var. 

candida Ldl. 

— var. flavescens Hook. 

grandiflora Hort, 

Jenischiana Rchb. f. 


cereola Lem.v.M.Regnelli Rchb.f. 


Clowesii Lindil. 

— var. castanea Rchb. f. 

gigantea O'Brien. 

Lamarcheana E. Morr. 

major Hort. 

pardina Rchb. f. 

pauciguttata Hort. 

cuneata Ldl. 

Endresii Nichols, 

festiva Rchb. f. 

flavescens Hook. v. M. candida 
Ldl. var. 

flavescens Ldl. 

Karwinskii Hort. v. M. Clowesii 
Pad 

—  Ldi. v. Odontoglossum Kar- 
winskii Ldl. : 

Leopoldiana Rchb. f. 

Moreliana Warn. v. M. specta- 
bilis Ldl. var. 

Phalaenopsis Nichols. 

Pinelli Lind. v. M. anceps Ldl. 

pulchella Hort. v. M. Phalae- 
nopsis Nichols. 

purpureo-violacea Hort. v. M. 
spectabilis var. Moreliana ro- 
sea Rchb. f. 

Regnelli Rchb. f. 

— var, purpurea Hort. 

Roezlii Benth. 

— var. alba Bull. 

vosea Hort. v. M.spectabilis Ldl. 
var. rosea Hort. 

Russelliana Ldl. 

Schroederiana Veitch. 

Sbeciosa KI. v. M. cuneata Ldl. 

spectabilis Ldl. 

— var, bicolor Hort. 

lineata Hort. 

Moreliana Rchb. f, 

Moreliana atrorubens 
Hort. 3 

Moreliana rosea Rchb.f,. 


Miltonia spectabilis var. purpurea Hort, 


radians Rchb. f, 

rosea Hort. 

virginalis Hort, 

stellata Ldl. v. M. candida Ldl, 
var. flavescens Hook. 

vexillaria Benth. 

— var, alba Finet. 

albo-marginata Hort, 

Ballantinae Hort. 

Hilliana Rchb. f. 

Kienastiana Rchb. f. 

Lawrenceana Hort. v. 
var. superba Rchb.f, 

Leopoldi II Rchb, f, 

leucoglossa Rchb, f, 

Measuresiana Hort. 

purpurea Hort, 

rosea Hort. 

rubella Bull, 

splendens Will. 

superba Rchb, f. 

vivginalis Hort. v. M. specta-- 
bilis LdI. var. 

Wayneri Hort. v. M. spectabilis 
Ldi. var. rosea Hort, 

Warscewiczii Rchb. f. 

— var. alba Hort. 

Weltoni Moor. 

xanthina Rchb. f. 


Mitopetalum BI. v. Tainia B1. 
Mitostigma BI. v. Platanthera L. C. 
Rich. 
Monachanthus Ldi. v. Catasetum L. C. 
Rich. : 
Monochilus Wall. v. Zeuxiné Ldl. 
Moorea Rolfe. 


irrorata Rolfe. 


Mormodes Ldi. 


atropurpureum Ldl. 

auveum Hort. v. M. buccinator 
Pdlvar 

buccinator Ldi. 

— var, aureum Rchb. f, 

majus Rchb. f. 

Cartonii Hook. 

citrinum Ldl. v. M. pardinum 
Batem. var. unicolor Hook. 

Colossus Rchb. f, 

Greenii Hook. f. 

Hookeri Rchb. f. 

— var. Cartoni Hook. 

igneum Ldi. 

— var. maculatum Rolfe. 

Lawrenceanum Rolfe. 

lentiginosum Hook. 

lineatum Bat. 

luxatum Ladl. 

— var, eburneum Rchb. f, 

punctatum Hort. 

purpureum Hort. 


Mormodes m#acranthum Ladl. v. M. Co- 
lossus Rchb, f, 
—  Ocannae Lind. et Rchb,. f, 
—  pardinum Batem, 
— — var. melanops Moore, 
— — — unicolor Hook. 
—  Rolfeanum L. Lind. 
— uncia Rchb. f, v. M. Greenii 
Hook, f, 
—  Wälliamsii Moore v. M. luxatum 
Ldl. var. eburneum Rchb. f. 
Myanthus Ldl. v. Catasetum L. C. Rich. 
—  spinosus Hook. v, Catasetum 
barbatum Ldl. 
—  trifidus Hook. v. Catasetum cer- 
nuum Rchb. f. 
Mycaranthus BI. v. Eria Ldl. 
Myoda Ldl. v. Haemaria Ldl. 
Myodium Salisb. v. Ophrys L. 
Myoxanthus Pœpp. et Endl. v. Pleuro- 
thallis R. Br. 
Myrobroma Salisb, v. Vanilla Sw. 
Mystacidium Ldl!. 
—  distichum Pftz. 
—  filicorne Ldl. 
Nanodes Ldl. v. Epidendrum L. 
—  discolor Läl. v. Epidendrum noc- 
turnum L. 
—  Medusae Rchb.f.v. Epidendrum 
Medusae Benth, 
Naventia KI. v. Lacaena Ldi, 
Neippergia Morr. v. Acineta Ldl. 
Neodryas Rchb. f, 
—  Sacciana Cogn. 
Neogyne Rchb. f, v. Cælogyne Gardne- 
riana Rchb. f. 
Neottia L. 
—  Nidus-avis L, 
Nephelaphyllum BI. 
—  pulchrum BI. 
—  scapigerum Hook, 
—  tenuiflorum BI. 
Nephranthera Hassk, v. Renanthera 
Lour. 
Nigritella C. L. Rich. 
—  angustifolia Rich. v. N. nigra 
Rchb. f. 
—  fragrans Rchb. f, v. N. suaveo- 
lens Koch, 
—  Moritziana Gremiliv.N. suaveo- 
lens Koch. 
—  nigra Rchb. f. 
—  suaveolens Koch, 
Norna Wahlenberg v. Calypso Salisb. 
Notylia Ldl. 
—  albida KI, 
—  bicolor Ldl, 
—  incurva Ldi. 
—  punctata Ldi. 
Oberonia Ldl. 
— _iridifolia Ldl, 
—  miniata Ldl, 


un 


Octadesmia Benth. 

—  monophylla Benth. 
Odontoglossum H. B. K. 

—  acuminatum Hort. v. O. Rossii 


Ldl. 

—  Alexandrae Batem. v. ©, cris- 
pum Ldl, 

—  anceps Lind, v. O. maculatum 
ex: 


—  Amesianum Hort. v. O. luteo- 
purpureum Ldi, var. 

—  Andersonianum Rchb. f. v. O. 
crispum Ldi, var, 

—  angustatum Ldi. 

—  aplerum Llave et Lex, v. O. 
Rossii Ldl, var, 

—  aspersum Rchb. f. v. O, Rossii 
Ldi. var. 

—  astranthum Rchb. f. 

—  aureo-purpuratum Hort. v. O. 
luteo-purpureum Ldl. 

— . baphicanthum Rchb. f. v. O. 
odoratum Ldi. var, 

—  bictoniense Ldl. 

— — var. album Lind. 

— —  — roseum Lind, 

— — —  speciosum Rgl. 

— — —  splendens Lind. v.O, b. 

var. album Lind, 

— — — sulphureum Lind. 

— — —  superbum Hort. v. O. 

b. Ldi. var, album 
Lind, 

—  blandum Rchb, f, 

—  Bleichroederianum Lind, 

—  Bluntii Rchb. f. v. O. crispum 
alive 

—  Boddaertianum Rchb. f, 

—  Bowmanni Rchb. f, v. O. cris- 
pum Ldl. 

—  Brandtii Krzl. et Wittm. 

—  Brassia KRchb. f. v. O. odora- 
tum Ldi. var. deltoglossum 
Veitch. 

—  brevifolium Lind. v. O. corona- 
rium Ldl. 

—  brevifolium Ldil, 

—  caerulescens Hort. v. O, Rossii 
Lal. 

—  candelabrum Lind. v. ©. coro- 
narium Ldl. 

—  cariniferum Rchb, f. 

—  Cervantesii Lex, 

— — var. Andersonii Moore v. 
©. crispum Ldl. var. An- 
dersonianum Veitch. 

— —  —  decorum Rchb, f. 

— — — lilacinum Lind, Rodig. 

— — — Morada Hort, 

— — — punctatissimum Rchb.f, 

— — — roseum Hort. 


31 


RAA en 


Odontoglossum Chaetestroma Rchb. f. 


v. O. Hallii Ldl. 

Chestertoni Hort. v. O. crispum 
dl var. 

chiriquense Rchb. f. v. O. coro- 
narium Ldl. var. - 

cirrhosum Ldl. 

— var. Hrubyanum Rchb. f. 

Klabochorum Rchb. f, 

citrosmum Ldi. 

— var. album Hort. 

Devansayeanum L. 
Lind. et Rodig. 

— —  punctatum Hort. 

—_  — TOSeUM AO 

Clowesii Ldl. v. Miltonia Clowe- 
sii Ldi. 

cœrulescens À. Rich. v. O. Rossii 
1Éells 

compactum Rchb. f. 

constrictum Ldl. 

—  yar. castaneum Hort. v. O. 

constrictum Ldl.var. San- 

derianum Rchb. f. 
pallens Hort, 

— — Sanderianum Veitch. 

Coradinei Rchb. f. v. O. Lind- 
leyanum Rchb. f. var. 

cordatum Ldl. 

— var. grandiflorum Hort. 

Kienastianum Rchb. f. 

—  sulphureum Rchb,. f. 
superbum Hort. v. O. 

c. Ldl. var. grandiflorum 

Hort. 

cordatum Paxt. v. O. maculatum 
Eex, 

coronarium Ldl. 

— var. chiriquense Veitch. 

miniatum Veitch. 

crinitum Rchb. f. 

crispum Ldl. 

— var, Alexandrae Bat, 

Andersonianum Veitch. 

angustatum Hort. 

Josephinae Will. 

lobatum Rchb. f. 

obtusatum Rchb. f. 

— pictum Rchb. f. 


tenue Rchb. f. 
— — apiatum Hort. 
aureum Will. 
Ballantinei Hort. 


Pollettianum Rchb.f. 


Odontoglossum crispum var. 


Bluntii 
Rchb. f. 
Bowmanni Rchb. f. 
Chestertoni Rchb. f. 
Cooksoni Will. et Moore. 
Dayanum Hort. 
elegantissimum Hort. 
fastuosum Hort. 
Ferrierense Rolfe. 
flaveolum Rchb. f, 
giganteum Moore. 
grandiflorum Hort. 
guttatum Moore. 
hyperxanthum Rchb. f. 
Jenningsianum Veitch. 
latimaculatum Rchb. f, 
Lehmanni Rchb. f. 
lilacinum Hort. 
limbatum Veitch. 
macrospilum Hort.v.O, 
odoratum Ldi. var. 
Marianae Moore. 
maximum Hort, 
mirabile Veitch v.O,. c. 
Ldi. var. Veitchia- 
num Hort. 
Mundyanum Hort. 
Popayani Rchb. f, 
purpureum Hort. 
Reginae Hort. 
roseum Moore. 
roseum punctatissimum 
Hort. 
Ruckerianum Veitch, 
Sanderianum Hort. 
Schræœderianum Hort,. 
Stevensii Will.et Moore. 
sulphureum Hort. 
v. OC. Eds 
flaveolum Rchb. f. 
Trianae Moore. 
Veitchianum Rchb. f, 
virginale Will. 
Walkerianum Hort. v. 
O. c. Ldl. var. gigan- 
teum Hort,. 
Warneri Moore. 
Wilsonianum Hort. 
Wrigleyanum Rchb.f. 
xanthotes Hort.(1) 
cristatellum Rchb. f. v. O. cris- 
tatum Ldi. var. 
cristatum Ldi, 
— var. Argus Rchb. f. 


(1) Il existe beaucoup de formes, variétés jardiniques, dont on ne connaît guère 
plus d'un ou deux exemplaires : plusieurs portent des noms en langue vulgaire et c'est 
là un excellent exemple à suivre dans toute nomenclature de variétés horticoles. 
Ex. Odontoglossum crispum var. the Duchess Hort. Nous nous sommes abstenu de 
les désigner ici; les caractères distinctifs de ces formes sont si peu apparents que 
souvent, leur enthousiaste possesseur seul a des yeux pour les voir. 


— 447 — 


Odontoglossum cristatum var. canariae 


Rchb. f. 

—  — cristatellum Veitch. 

crocidipterum Rchb. f. 

— var. Dayanum Rchb. f. 

cuspidatum Rchb. f. v. O. luteo- 
purpureum Ldl. var. 

Dawsontamum KRchb. f. v. O. 
Rossii Ldl. 

dellense Rchb. f. 

deltoglossum Rchb. f. v. O. odo- 
ratum Ldi. var. 

Denisoni:e Hort. 

Donianum Hort. v. O. macula:- 
tum Lex. var. 

Dormannianum Rchb. f. 

Edithiae Warner. 

Edwardi Rchb. f. 

Egertonii Ldl. v. O. pulchel- 
lum Batem. 

Ehrenbergii Ldl. v. O. Rossii 
Ldl 


. VAT. 

elegans Rchb. f. 

epidendroides H. B. K. 

erosum Rchb. f. v. O. stellatam 
Ladl. 

eugenes Hort. Veitch. 

facetum Rchb. f. v. O. luteo- 
purpureum Ldl. var. 

Galeottianum A. Rich. 

gloriosum Rchb. f. vx. O. odora- 
tum Ldi. 

gracile Ldl. 

grande Ldl. 

— var. aureum Hort. 

— —  magnificum Will. 

— — pallidum Hort. v. ©. 

Insleayi Bark, 

— —  Williamsianum Veitch. 

guttatum Hook. v. O. crispum 
Ldi.var. Ruckerianum Rchb.f. 

Hallii Ldl. 

— var, leucoglossum Rchb. f, 

— — Lindenii Rodig. 

— — nigrum Hort. 

— —  xanthoglossam Rchb. f. 

Harryanum Rchb. f. 

hastilabium Ldl. 

— var. fuscatum Hook. v. O. 

cariniferum Rchb. f. 

hebraicum Rchb. f. 

Hinnus Rchb. f. v. O. luteo- 
purpureum Ldl. 

histrionicum Rchb. f. v. O. lu- 
teo-purpureum Ldl.var.Mulus 
Veitch. 

Hookeri Rchb. f. v. O. cordatum 


Ldl. 

Hrubyanum Hort, v. O, cirrho- 
sum Ldl. var. 

Humeanum Rchb. f.v. O.Rossii 
Ldi. var. 


Odontoglossum hystrix Batem. v. O. 


lateo-purpureum Ldl. 

Insleayi Ldi. 

— var. Imschootianum Hort, 

— — leopardinum Rgl. 

— —  macranthum Ldl. v.O. 

Schlieperianum Rchb.f. 

— — pantherinum Rchb. f. 

— — splendens Rchb. f. 

soplocon Rchb. f. v. O. Edwardi 
Rchb. f. 

Fenningsianum Rchb. f. v. O. 
crispum Ldl. var. 

Karwinskii Paxt. v. O. laeve 
Ldl. 

Krameri Rchb. f. 

— var. album Rolfe. 

Kranzlinii O'Brien. 

laeve Läl. 

— var. Reichenheïimii Moore. 

latimaculaium Hort. v. O. cris- 
pum Ldl. 

— André v. O. odoratum Lidl, 

Var. 

Lawrenceanum Hort. v. ©. 
Schlieperianum Rchb. f. 

Lecanum Rchb. f. v. O. odora- 
tum Ldl. var. 

Lehmanns Rchb. f. v. O. cris 
tatum Ldi. var. cristatellam 
Veitch. 

—  Hort. v. O. crispum Ldl. var. 

leopardinum Regel v. O. Ins- 
leayi Ldl. var. 

ligulare Rchb. f. v. O. Lind- 
leyanum Rchb. f. var. 

Hiliiflorum Hort. v. O. ramosis- 
simum Ldl. var. 

limbatum Rechb. £, v. O. cris- 
pum Ldl. var. 

Lindeni Ldl. 

Lindleyanum Rchb. f. 

— var. albidulum Hort. 

— — ligulare Veitch. 

—  —  mirandum Veitch. 

Londesboroughianum Rchb. f. 

Luddemannianum Rgl. v.O. ma- 
culatum Lex, 

lunatum Rchb. f. v. Aspasia lu- 
nata Ldäl. 

luteo-purpureum Ldl. 

— var. Amesianum Rchb. f. 

— —  amplissimum Rchb. f. 

— — Cobbianum Hort. 

— — cuspidatnm Veitch. 

—  ——  facetum Veitch. 

— —  Hinnus Veitch, 

— — Lindeni Rchb. f. 

— — maguificum Hort. 

— — Moules Veitch. 

— —  odoratum Ldl. v.O.odo- 

ratum Ldl. 


= M 


Odontoglossum luteo-purpureum var. ra- 


diatum Rchb. f. 
Sceptrum Rchb. f. 
Vuylstekeanum Veitch, 
xanthoglossumRchb.f. 

VO" Tdl/ var. cus- 

pidatum Veitch. 
lyroglossum Hort, v. O. luteo- 

purpureum Ldl. 
macrophyllum Rchb. f, v. O. 

odoratum Ldl, var. 
maculatum Lex, 

— Var, antennatum Rchb, f. 
Donianum Hort, 
Duvivierianum Rchb.f. 
integrale Rchb. f. 
superbum Rchb. f. 
madrense Rchb. f, v. O. maxil- 

lare Ldi, 
marginellum Rchb. f. 
Marriottianum Rchb. f. 
maxillare Ldl, 

—  Lind, v. O. nebulosum Ldl, 

membranaceum Ldl., v. O. Cer- 
vantesii Lex, 

miniatum Hort. v. O. corona- 
rium Ldl, var. 

mirabile Hort. v. O. crispum 

Ldl. var. Veitchiinum Rchb. f. 
mirandum Rchb. f. v. O. Lind- 

leyanum Rchb. f, var. 

Mulus Rchb. f. v. O. luteo-pur- 
pureum Ldl. var. 

Murrellianum Rchb. f. 

— var. cinctum Rgl. 

naevium Ldl. 

— var, grandiflorum Hort. 

majus Ldl. v. O, odo- 
ratum Ladl. 

nebulosum Lidl. 

— var. candidulum Rchb, f, 

pardinum Hort. 

punctatum Hort. 

nevadense Rchb. f. 

nobile Hort. v.O. Pescatorei Ldl. 

odoratum Ladl. 

— var, album Hori, 

aureum Hort. 

baphicanthum Veitch. 

deltoglossum Veitch. 

Glonerianum Lind. 

hebraicum Veitch. v. O. 

hebraicum Rchb. f. 
latimaculatum André. 
lineoligerum Rchb. f, 
hemileucum. Rchb.f, 
Leeanum Rchb. f. 
macrophyllum Rchb. 

PV. 10.10.41. var, 

superbum Hort, 
striatnm Rchb. f. 
superbum Hort. 


Odontoglossum Œrstedii Rchb, f. 


oncidioides Hort, v. O. Londes- 
boroughianum Rchb, f. 

pardinum Ldl. 

bendulum Batem. v. O, citros- 
mum Ldi, 

Pescatorei Lind, 

— var, album Hort, 

aurantiacum Hort. 

dilectum Rchb, f. 

flaveolum Hort, 

Germinyanum Lind. 

grandiflorum Hort, 

Knoxii Hort, 

leucoxanthum Rchb. f. 

Lewisii Hort. 

limbosum Rchb, f. 

Lowianum Rchb. f. 

maculatum Rchb. f. 

melanocentrum Rchb.f. 

Dburburatum Hort. v.O. 
P. Lind. var. Schræ- 
derianum Rchb. f, 

roseum Hort, 

Schræœderianum Rchb.f,. 

Splendens Hort. v.O. P. 
Lind, var. grandiflo- 
rum Hort. 

Superbum Hort. v.O.P. 
Lind. var, grandiflo- 
rum Hort. 

Veitchianum Rchb. f. 

—  violaceum Hort. 

Phalaenopsis Rchb. f. v. Milto- 
nia Phalaenopsis Ldl. 

blatyodon Rchb, f. v. O. Linde- 
nii Ldl, 

Pollettianum Rchb.f, v. O. cris- 
pum Ldl, var. 

polyxanthum Rchb,. f. 

— var, grandiflorum Hort. 

praenitens Rchb. f. 

Praenitens Hort. v. O. luteo- 
Purpureum Ldl. var. facetum 
Veitch. 

Praestans Rchb,. f. v. O. odora- 
tum Lal, 

Prionopetalum Lawrence v. O. 
luteo-purpureum Ldl. 

pulchellum Batem. 

— var, Dormannianum Will. 

majus Hort. 

Purum Rchb. f. v. O. Wallisii 
Rchb. f, var. 

vadiatum Rchb. f. v. O. luteo- 
purpureum Ldi, var. 

ramosissimum Ldl. 

— Var. liliiflorum Veitch. 

—  xanthinum Hort. 

Re han RChb. VAR O: 
laeve Ldl. 

retusum Ldl, 


PRE SU Em I 


— 449 — 


Odontoglossum rigidum Ldl. 


Roezlianum Lind. 

Roezliÿ KRchb. f. v. Miltonia 
Roezlii Benth. 

roseum Ldl. v. Cochlioda rosea 
Ldi. 

Rossii Ldl. 

— Var. aspeérsum Veitch. 

— cœærulescens A. Rich. 

— —  Ehrenbergii Veitch. 

— —  Humeanom Veitch. 

— —  majus Van Houtte. 

—  —  rubescens Läl, 

—  —  virescens Hort. 

—  Warnerianum Veitch. 

Rolschélinsiem Rchb. f. v. O. 
Wilkeanam Rchb. f. var. 

rubescens LAI. v. O. Rossii Ldl. 

Ruckerianum Rchb. f, v. O. cris- 
pum Ldl. var. 

Sanderianum Rchb. f, v. O. con- 
strictum Ldl. var. 

Sceptrum Rchb. f. v. O. luteo- 
purpureum Ldl. var. 

Schillerjanum Rchb. f. 

Schlieperianum Rchb. f. 

Schlimii Lind. v. O. luteo- 
purpureum Ldl. var. 

Schrœderianum Rchb. f, 

Shectatissimum Läl. v. O. trium- 
phans Rchb. £, 

stellatum Ldl. 

stellimicans Rchb. f. 

tentaculatum Rchb. f. 

figrinum Paxt. v. Oncidiam 
tentaculatum Llav. et Lex. 

tripudians Rchb. f. 

— var, grandiflorum Hort. 

— — leacoglossam Rchb. f. 

— — oculatam Rchb. f, 

— — xanthoglossumRchb. f. 

triumphans Rchb. f. 

— var. superbum Hort, 

— —  Whiteleyi Hort. 

Uro-Skinneri Ldl. 

velleum Rchb. f. 

vexativuam Rchb. f. 

vexillarium Rchb. f. v. Miltonia 
vexillaria Benth. 

Vicior Rchb. f. v. O. Harrisia- 
num Rchb. f. 

Vuylstekeanum Rchb. f. v. O. 
lateo-purpureum Ldl. var. 

Wallisii Rchb. f. 

—. var. purum Rchb. f. 

Warnerianum Rchb. f. v. O. 
Rossii Ldi. var. 

Warocqueanum Lind. 

Warscewiczii Bridgesv.O.Schlie- 
perianum Rchb. f. 

—  Rchb.f. v. Miltonia Endresii 

Rchb. f. 


Odontoglossum Wattianum Rolfe, 
—  Weltonti Lind. v.Miltonia Wars- 
cewiczii Rchb. f. var. 
—  Wilckeanum Rchb. f. 
— — var, albens Rchb, f. 
— — — pallens Rchb. f. 
— — —  Rotschildianum Sander. 
— —  sulphuream Rchb. f. 
_ Winnie Rchb. f. v. O. 
grande Ed. var. 
—  xanthinum Hort. v. O. ramosis- 
simum Ldl. var. 
Odontostylis Breda v. Bulbophyllum 
Thou. 
Oecsoclades Laäl. v. Saccolabium BI. 
—  maculata Ldl. v. Eulophidium 
maculatum Pftz. 
Oerstzdella Rchb. f. v. Epidendrum L. 
Omoea B1. v. Saccolabium Bl. 
Oncidium Sw. 
—  acinaceum Lidl. 
—  acrobotryum KI. v. O. Harriso- 
nianum Ldl. 
—  albo-violaccum Rich. et Gal. v. 
O. incurvum Bark. 
—  altissimum Sw. 
—  — var. Baueri Ldl. 
—  —  —  ensatum Ldl. 
— — — filipetalam Lem. 
—  amictum Laäl. 
—  ampliatom Ldi. 
— — var. majus Hort. 
—  andigenum Rchb. f. 
—  anomalum Rchb. f. v. O. pan- 
chrysum Läl. 
—  anthrocrene Rchb. f. 
—  ascsndens Läl. v. O. Cebolleta 
Sw. var. 
—  anreum Läl. 
—  auriferum Rchb. f. 
—  aurosum Rchb. f. v. O. excava- 
tum Ldl. var. 
—  barbatum Laäl. 
— — var. ciliatum Ldl, 
—  Barkeri Ldl. v. O. tigrinum 
Llav. et Lex. 
—  Batemanianum Knowl. et Westc. 
—  Baueri Läl. v. ©. altissimum 
Sw. var. 
—  Bergamia Hort. v. Odontoglos- 
sum Rossii Ldl. 
—  bicallosum Laäl. v. O. Cavendis- 
hianum Batem. var. 
—  bicolor Ldl. 
—  bicornuium Hook. v. O. pubes 


—  bifolium Sims. 

— — var. majus Hort. 

—  bifrons Ldl. v. O. Warscewiczii 
Rchb. f. 

—  Bluntii Rchb. f. v. Miltonia 
Blantii Rchb. f. 


Oncidium cucullatum var. Phalaenopsis 


Oncidium Bondeanum Sims v. O. luri- 
dum var. guttatum Ldl. 
—  Boydii Hort. v. O.luridum var. 
guttatum Ldi. 
—  brachyphyllum Ladl, v. O. Cebol- 
leta Sw. var. 
—  bracteatum Rchb. f. 
—  Braunii Rel. 
—  Brunleesianum Rchb. f. 
—  caesium Rchb, f. 
—  calanthum Rchb. f, 
—  calloglossum Rchb. f. 
—  caminiophorum Rchb. f. 
—  candidum Ldl, 
—  candidum Horït. v. Miltonia can- 
dida Ldl. 
—  carthaginense Sw. 
—  Cavendishianum Batem. 
var. bicallosum Ldl. 
chrysophyllum Rchb.f, 
pachyphyllum Hook. 
—  Cebolleta Sw. 
var. ascendens Ldl. 
brachyphyllum Lal, 
violaceum Hort, 
—  cheirophorum Rchb. f. 
—  chrysodipterum Veitch. 
—  Chrysomorphum Ldl. 
—  chrysophyllum Rchb. f. v. O. 
Cavendishianum Batem. var. 
—  Chrysopyramis Rchb, f. 
—  chrysorapis Rchb. f. v. O. cor- 
nigerum Ldl. 
—  chrysothyrsus Rchb. f, 
—  Ciliatum Ldl.v. O. barbatum Ldl. 
var. 


—  citrinum Ldl.v.O.concolor Hook. 


—  Columbae Hort, y. O. strami- 
neum Ldl, 

—  concolor Hook,. 

—  cornigerum Ldi, 

—  corynephorum Ladl, 

—  crispum Lodd. 

var. flabellulatum Lind. 

grandiflorum Hort. 

mayginatum Hort. v. 

O. Forbesii Hook. 

—  Croesus Rchb. f. 

—  Cruciatum Rchb. f, v, O. pubes 
Ldl. var. flavescens Ldl. 

—  Cruentum Hort, v. O. reflexum 
Ldl. var. pelicanum Mart. 

—  Cryptocopis Rchb. f. 

—  cucullatum Ldl. 

var. andigerum Rchb. f. 

—  Dayanum Rchb. f, 

flavidum Hort. 

macrochilum Ldl. 

nubigerum Ldi. 

olivaceum Veitch. 


ee 


Veitch v. O. Phalae- 
nopsis Rchb. f. 

spathulatum Ldl. 

cuneatum Scheidw. v. O. luri- 
dum Ld]. var. guttatum Ldl. 

cupreum Spr. v. O. pulvinatum 
Ldi. var. 

curtum Ladl. 

dasystyle Rchb. f. 

Dawsoni Will, v. O. excavatum 
Pdlivar: 

deltoideum Ldl. v. O. divarica- 
tum Ldi. var. 

Diadema Rchb. f. v. O. serratum 
die 

divaricatum Ldi. 

— var, deltoideum Ldl. 

ensatum Ldl. v. O. altissimum 
SW. Var. 

eurycline Rchb. f. 

euxanthinum Rchb. f. 

excavatum Ldl. 

— var. aurosum Lem. 

—  Dawsoni Will. 

AU Ldl, v. O. graminifolium 
Ldl. | 

filipetalum Lem. v. O. altissi- 
mum Sw. var. 

fimbriatum Ldl. 

flabelliferum Pinel v. O. Gard- 
neri Ldi. 

flavidum Hort. v. O. cucullatum 
Ldl. var. 

flexuosum Sims. 

— var. majus Hort. 

Forbesii Hook., 

— var, grandiflorum Hort. 

—  maximumLind.etRodig. 

Forkelii Scheidw. 

Funckii Ki. v. O. microchilum 
Batem. 

Jfunereum Llave et Lex. v. O. 
altissimum Sw. 

fuscatum Rchb. f. v. Miltonia 
Warscewiczii Rchb. f. 

Galeottianum Hort. v. Odonto- 
glossum citrosmum Ldi. 

gallopavinum Morr. v. O. Bate- 
manianum Kn, et Westc. 

Gardneri Ldl. 

Gireoudianum Rchb, f. v. Bras- 
sia Gireoudiana Warsc. 

glaucum KI. v. O. CebolletaSw. 

globuliferum H,. B. K. 

graminifolium Ldl. 

grandiflorum Hort. v. O. For- 
besii Hook. 

guttatum Ldl. 
Ediivar: 

haematochilum Ldl. 

Harrisonianum Ldl. 


v. O. luridum 


Oncidiam macranthum var. Williamsia- 


— var. atratum Ldi. 

— — Ernesti Rchb. f. 

— — flavescens Ldl. 

hastiferum Hort. v. O. macran- 
thum Ldil. 

Henchmanni Lind. v. O. roseum 
Lodd. 

heteranthum Poepp. et Endl. 


holochrysam Rchb. f. 


Hunéianum Hook. v. O. roseum 
Lodd. var. sanguineum Ldl. 

hyphaematicum Rchb. f. 

incurvum Bark. 

— var. album Lind. 

insculptum Rchb. f. 

Inslzayi Batem. v. Odontoglos- 
sum Insleayi Bark. 

iniermedium Kn. et West. v. O. 
luridum Ldl. var. 

fonosmum Rchb. f. v. O. tigri- 
num, var. unguiculatum Ldl. 

iridifoliom H. B. K. 

Faneirense Rchb. f. v. O. lon- 
gipes Läl. 

Jonesianum Rchb. f. 

— var. flavens Rchb. f. 

— —  phaeanthum Rchb. f. 

juncifolium Ldäl. v. O. Cebol- 
leta Sw. 

Keilianum KRchb. f. v. Brassia 
Keiliana Rchb. f. 

Kramerianum Rchb. f. 

lamelligeram Rchb. f. 

Lanceanum Ldl. 

— var. Louvrexianum Rchb. f. 

— —  superbum Hort. 

Lawrenceanum Ldl. v. Brassia 
Lawrenceana Ldi. 

leopardinum Ldl. 

Leopoldianum Rolfe. 

leucochilum Bat. 

Lietzei Rgl. 

— var, aureo-maculatum Rgl. 

— — bicolor Rgl. 

Limminghei E. Morr. 

longifolium Lal.v. O. Cebolleta 
Sw. 

longipes Ldl. 

— var. Cræsus Veïtch. v. O. 
Cræsus Rchb. f. 

— — monophyllus Regel. 

loxense Rchb. f. (X ?) 

ludens Rchb. f. 

luridum Ldl. 

— var. Dodgsoni Will. 

— — guttatum Ldl. 

— — intermedium Ldl. 

— — purpuratum Läl. 

luteum Rolfe. 

macranthum Ldil. 


num Rchb. f. 

macrochilum Ldl. v. O. cuculla- 
tum Ldl. var. 

maculatum Ladl. 

— var. Russelliaoum Hort. 

Marshallianum Rchb. f. 

Martianum Ldi. 

metallicam Rchb. f. 

microchilum Batem. 

micropogon Rchb. f. 

monachicum Rchb. f. 

monoceras Hook. 

nanum Ldi. 

nebulosum Ldl. v. Odontoglos- 
sum nebulosam Ldl. 

nigratum Läl. 

nodosum Ed. Morr. v. O. Kra- 
merianum Rchb. f. 

nubigenum Läl. v. O. cuculla- 
tum Ldi. var. 

oblongatum Ldl. 

O'Brieni Hort. v. O. pubes 
Laäl. 

obrysatum Rchb. f. 

olivaceum LA. v. O. luridum Läl. 

ornithorhyachum H. B. K. 

— var. albiflorum Rchb. f. 

— —  majus Hort. 

orthotis Lind. 

oxyacanthosmum Hort. v. ©. 
longipes Ldl. 

pachybhyllum LA. v. O. Caven- 
dishianum Batem. 

pallidum Läl. v. O. Harrisonia- 
num Ldl. 

panchrysum Läl. 

Papilio Ldl. 

— var. album Hort, 

— — Eckhardtii Lind. 

—  limbatum Hook. 

—  maÿjus Rchb. f. 

DR Ldl. 

pelicanum Mart. v. O. reflexum 
Ldl. var. 

pentaspilum Hofm. v. O. Har- 
risonianum Ldl. 

Phalaenopsis Lind. et Rchb. f. 

phyllochilum Morr. v. O. ha- 
statum Li. 

phymatochylum Ldl. 

Pinellianum Hort. v. O. Bate- 
manianum Kn. et Westc. 

praetextum Ed. Morr. v. ©. 
Gardneri Ldl. 

praetextum Rchb. f. 

puberulum Spreng. v. O. pubes 
Li. 


pubes Ldl. 

— var. flavescens Ldl. 
pulchellum Hook. 
pulvinatum Ldl. 


Ne 


Oncidium pulvinatum Ldl, var. cupreum 


Spreng. 
grandiflorum Rgl, 
majus Will. 
pumilum Ldl. 
pyramidale Hffg. v.O.pubes Ldl. 
pyramidale Ldl. 
quadricorne KI. v. O. hians LdI. 
ramosum Ldl. v. O. Batemania- 

num Kn. et Westc, 
raniferum Ldl, 
reflexum Ldl. 

— var. pelicanum Mart. 

suave Ldi. 
Retemeyerianum Rchb. f. 
Rigbyanum Paxt, v. O. Sarco- 

des Ldl. 

Rogersii Lem. v. O, varicosum 

Ldi. var. 
roseum Lodd. 

— var. sanguineum Ldl. 

superbum Hort. 

rupestre Ldi. 

Russellianum Hort. v. O. macu- 
latum Ldl. var. 

Russellianum Ldi. 

Sanderianum Rolfe, 

sanguineum Ldl. v. O. roseum 

Lodd. var. 
sanguinolentum Paxt, 
sarcodes Ldl. 

— var. discoidale Lind. 
Schlimii Ldl. 

sciurus Scheidw. 
serratum Ldi. 

sessile Ldl, 
speciosum  Hook. v. 

cuneata Ldl. 
sphacelatum Ldi. 

— var. majus Ldl, 

sphegiferum Ladl, 

shilopterum Ldl. v. O. Batema- 
nianum Kn, et Westc. 

splendidum À. Rich. v. O. tigri- 
num Llav. et Lex, var. 

Sprucei Ldl,. 

stelligerum Rchb. f, v. O. hasta- 

tum Ldl. 
stenopetalum Lem, v. O. Bate- 

manianum Knowl. 
stramineum Ldl. 
suave Ldl. v. O. reflexum Ldi, 

var. 
suaveolens Hook, v. Brassia Lan- 
ceana Ed. 
superbiens Rchb. f. 
Suttoni Batem. 
tetrapetalum Willd, 
tigrinum Llav. et Lex. 
— var. splendidum Hook, 
unguiculatum Ldl. 
trilingue Ldi, 


Miltonia 


Oncidium triquetrum Ldl, 


trulliferum Ldl. 

undulatum Will. non Ldi, v. 
O. superbiens Rchb. f, 

unguiculatum KI. v.O. concolor 
Hook. 

unguiculatum Ldl. v. O. tigri- 
num Llav. et Lex, var, 

unicolor Rolfe. 

unicorne Ldi. v. Q. monoceras 
Hook. 

uniflorum Booth, 

urophyllum Ldl. 

varicosum Ldl. 

— var. Rogersii Rchb. f. 

variegatum Sw. 

viperinum Ldl. 

volvox Rchb. f. 

Warneri Ldl. 

— var. purpuratum Will, 

Warscewiczii Rchb. f. 

Weltoni Ldl. v. Miltonia Wars- 
cewiczii Rchb. f. var. 

Wentworthianum Batem. 

Wheatleyanum Godefr. 

Widgreni Ldl. 

Wyayae Hook. v. O. gramini- 
folium Ldl, 

xanthochlorum Rchb. f. v. O. 
oblongatum Ldl. 

xanthodon Rchb. f. 

zebrinum Rchb, f. 

zonatum Cogn. 


Onychium BI. v. Dendrobium Sw. 
Ophrys L. 


andyrachnites L. v. O. Arachnites 
Murr. 

anthropophora L. v. Aceras an- 
thropophora R, Br. 

apifera Huds. 

Arachnites Murr. 

aranifera Huds. 

— var. atrata Rchb. f. 

Bertolonii Moretti. 

bombylifera Bert. 

cordata L. v. Listera cordata 
RASBr 

fucifera Curt. v. O. aranifera 
Huds. 

fuciflora Rchb. f, v. O. Arach- 
nites Murr. 

insectifera L. v.O.apifera Huds. 

lutea Cav. 

muscifera Huds. 

myodes L, v.O. muscifera Huds,. 

ovata L.. v. Listera ovata R. Br. 

oxyrhynchos Vis. 

paludosa L. v. Malaxis padulosa 
SW. 

Scolopax Cav. 

Speculum Bert. v. O. Bertolonii 
Moretti., 


ER <E SR 


Ophrys tenthredinifera Rchb. f. +. O. 

Bertolonii Moretti. 
Orchidium Sw. v. Calypso Salisb. 
Orchis L. 

—  africana Sw. v. Disa grandiflo- 
ra L. 

—  bifolia L. v. Platanthera bifolia 
Rich. 

—  conoÿsea L. v. Gymnadenia co- 
nopsea R. Br. 

—  coriophora L. 

—  foliosa Solander 

—  fusca Jacq. v. O. purpurea Huds. 

—  globosa L. 

—  hircina L. v. Himantoglossum 
hircinum Spreng. 

—  incarnata L. 

—  Jactea Hort. v. O. maculata, v. 
alba Auct. ou O. latifolia L. v. 
albiflora Auct. 

— latifolia L. 
var. albiflora Auct. 
— violacea Hort. 
—  laxiflora Lam. v. O. palustris 


—  longicornu Sm. 

—  maculata L. 

var. alba Auct. 

—  purpurea Hort. 

—  mascula L. 

—  militaris L. 

— montana Sm. . 
montana Schauer 

—  Morio L. 

—  odoratissima L. vs. Gymnadenia 
odoratissima Rich. 

—  pallens L. 

—  palustris Jacq. 

— papilionacea L. 

var. Carnea Hort. 

expansa Hort. 

purpurea Hort. 

—  purpurea Huds, 

—  pyramidalis L. v. Anacamptis 
pyramidalis Rich. 

—  sambucina L. 

var. incarnata W. 

lutea Auct. 

purpurea Koch. 

—  Simia Lam. 

—  spectabilis L. 

—  speciosa Hort. v. O. mascula L. 

—  tridentata Scop. 

—  ustulata L. 

— variegata All. v. O. tridentata 
Scop. 


Platanthera 


| 
| 
l 


Ornitharium Läl. v. Sarcochilus R, Br. 
Ornithidium Salisb. 
— album Hook. v. 
ochroleucum Ldl. 

—  densum Rchb. f. 
Ornithocephalus Hook. 

—  grandiflorus Ldl. 
Ornithochilus Wall. v. Aerides Lour. 
Orsidice Rchb. f. v. Sarcochilus R. Br. 
Orthochilus Hochst. v. Eulophia R. Br. 
Ostandra Salisb. v. Geodorum Jacks. 
Oxysepalum Wight v. Bulbophyllum 

Thou. 
Pachyne spectabilis Salisb. v. Phajus 

Tankervillei BI. 

Pachystoma Bl. Rchb. f. v. Ipsea Ldl. 

—  Fortunei Rchb. f. v. Spatho- 

glottis Fortunei Ldl. 

—  speciosum Rchb. f. v. Ipsea spe- 

ciosa Läl. 

—  Thomsonianum Rchb. f. v. Ipsea 

Thomsoniana Pftz. 
Palumbina Rchb. f. 

—  candida Rchb. f. 
Paphinia Ldl. 

—  cristata Ldl. 
var. Modigliana Rchb. f. 
— Randii Hort. 

— _ grandiflora Barb. Rod. 

—  grandis Rchb. f.v. P.grandiflora 
Barb. Rod. 

—  rugosa Rchb. f. 

var. Sanderiana Rchb. f. 

—  Sanderiana Rchb. f. v. P. ru 

gosa Rchb. f. var. 

— tigrina Rchb. f. v. Houlletia 

tigrina Lind. 
Paphiopedilum Pftz. (1) 
Paphiopedium (Pftz.) 
—  Acis (Veitch) v. P. oenanthum 
Rchb. f. 

— Argus (Rchb. f.) Pftz. 
var. Boddartii Hort. 
Moensii Hort. 
Morrenianum Hort, 
multicolor Hort. 
nigricans Hort. 
superbum Hort. v. P. 

superbiens (Rchb. f.) 
—  barbatum (Ldl.) Pftz. 
var. Argus Hort. v. P. Ar- 

gus (Rchb. f.) 
—  bifiorum Hort. v. P. b. 
var. Crossii Hort. 
Crossii Hort. 


Camaridium 


(1) M. le Dr Pftzer vient de publier (13 avril 1894) un intéressant travail : 
Beiträge zur Systematik des Orchideen. Ce mémoire contient entre autres l'énu- 
mération de toutes les espèces appartenant aux genres Cypripedilum, Selenipedilum 


et Paphiopedilum. 


32 


AE 


Paphiopedium caudatum var. Lindenii 


Paphiopedium barbatum var. giganteuin 


Hort. v. P. b. (Ldi.) 
var. nigrum Hort. 
grandiflorum Hort, 
Hookevae (Rgl.) v. P. 
Hookera: (Rchb. f.). 
majus Hort.v.P b. var. 
grandiflornm Hort. 
nigrum Hort. 
Obrienii Rchb. f. 
pallidum Hort. 
pictum Hort. 
plumosum Hort. 
pulcherrimum Hort. v. 
P.b. var. grandiflo- 


rum Hort. 

—  —  purpureum Hort. v. 
P. b. var. Obrienii 
(Rchb. f.). 


splendens Hort. 

superbum Lind. v. P. 
superbiens (Rchb.f.). 

Veitchii Van Houttev. 


P.superbiens(Rchb.f.), 


violaceum Hort. 

Wagnerianum Hort.v. 
P. barbatum Ldi. 

Wagnerianum Moore 
v. P. b. var. Crossii 
Hort. 

bellatulum (Rchb. f.) Pfitz. 

— var, lineatulum Hort. 

roseum Hort. 

biflorum Hort. v. P. barbatum 
(Ldl.) var. Crossii Hort. 

Binotii Hort. v. P. vittatum 
(Vell.) Pftz. 

Boissierianum (Rchb. f.) Pfitz. 

Boxalli (Rchb. f.) v. P. villosanm 
(Ldl.) Pftz. var. 

Brownii (Rchb. f.). 
Bullenianum (Rchb. f.) Pftz. v. 
P. Hookerae (Rchb. f.) var. 
Burbidgei (Rchb. f.) Pfitz. v. 
P. Dayanum (Rchb. f.) Pftz. 

callosum (Rchb. f.) Pfitz. 

— var. giganteum Hort. 

illustre Hort. v. P. c. 
var. superbum Hort. 

Cambridgeanum Hort. v. P.in- 
signe (Wall.) Pftz. var. 

Cannaerti Hort. v. P. Stonei 
(Rchb. f.). 

caricinum (Ldi.) Pfitz. 

caudatum (Ldl.) Pfitz. 

— var. Albertianum Rchb.f. 

delicatum Hort.v. P. c. 
var, Wallisii Veitch, 

giganteum Carr, 


Veitch. 
roseum Linden v. P. 
c. var. Warscewiczii 
‘(Godefr.) Pfitz. 
S'eegerianum Hort.v.P. 
c.var. Wallisii Veitch. 
superbum Hort. v. P. 
c. var. Warscewiczii 
Godefr, 
Wallisii Veitch. 
Warscewiczii Godefr. 
Chantini (Godefr.) v. P. insigne 
Pfitz. var. 
Chamberlainianum 
Pfitz. à 
ciliolare (Rchb. f.) Pfitz. 
— var. magaificum Hort. 
concolor (Parish.) Pftz. 
—  var.chlorophyllum Rchb. f, 
Gardenianum Hort. 
mediolineatum Hort. v. 
P.c.var.chlorophyl- 
lum Rchb. f, 
niveum (Rchb. f.) v. P. 
niveum (Rchb. f.). 
Regnieri Rchb. f. 
— — tonkinense Godefr. 
majus Hort. 
cruciforme (Zoll et Mor.) v. P. 
Lowii (Ld].) 
Curtisii (Rchb. f.) Pftz. 
dariense (Rchb. f.) v. P. longi- 
folium Pftz. 
Dauthieri Hort, v. P. Harri- 
sianum (Rchb. f.) var. 
Dayanum (Rchb. f.) Pfitz. 
— var, splendens Hort. 
superbum Hort. 
Drurii (Beddome) Pfitz. 
— var. dilectum Hort. 
Elliottianum (O'Brien) Pfitz. 
Fairieanum (Ldl.) Pftz. 
Forsterianum Hort. v. P. San- 
derianum (Rchb. f.). 
glanduliferum (B1.) Pfitz. 
Godefroyae (Godefr.). 
gracile Hort. v. P. longifolium 
(Ldl.) Pfitz. var. 
grandiflorum (Pavon) v. P. Bois- 
sieranum (Rchb. f.) Pftz. 
Hartwegii (Rchb. f.) v. P. lon- 
gifolium (Rchb. f.) var. 
Haynaldianum (Rchb. f.) Pftz. 
Hincksianum (Rchb.f.) v.P. lon- 
gifolium (Rchb. f.) Pfitz. var. 
hirsutissimum (Ldi.) Pfitz. 
— var. cœrulescens Hort. 
Hookerae (Rchb. f.) Pfitz. 
— var. Bullenianum Rchb, f, 


{ O'Brien ) 


np ASS 
Paphiopedium Lowii Ldl. 


Paphiopedium Hookerae var. luteum 


Hort. 

majus Hort. 

Hyeanum Rchb. f. v. P. Law- 
renceanum Rchb. f. var. 

insigne (Wall.) Pfitz. 

— var. albomarginatum Will. 

aureum Hort. 

Cambridgeanum Hort. 

Chantinii Rafarin. 

gracile Hort. v. P. insi- 
gne var. Sanderae 
Hort. 

grandifiorum Hort. 

Kimballianum Hort. 

longisepalum Sander. 

Maulei Moore. 

maximum Hort. v. P. 
c. var. grandiflorum 
Hort. 

punctatum  violaceum 
O'Brien v. P. i. var. 
Chantinii Rafarin. 

rubromaculatum Hort. 


Sanderae Hort. 
Sylhetense Hort. 
inversum (Sand.) v. P. Latha- 
mianum (Rchb. f.) var. 
javanicum (Reinw.) Pfitz. 
— var. virens Rchb. f. 
Kaïeteurum N. E. Brown v. P. 
Lindleyanum (Schomb.) Pftz. 
var. 
Kimballianum Hort. v.P.insigne 
(Wall.) Pfitz. var. 
Klotzschianum (Rchb. f.) Pftz. 
laevigatum Batem. v. P. philip- 
pinense (Rchb. f.) Pfitz. 
Lawrenceanum (Rchb. f.) Pfitz. 
— var. coloratum Hort. 
Hyeanum Lind. et Rod. 
Lindeni Hort. v. P. L. 
var. Hyÿeanum. 
majus Hort. 
nigrum Hort. 
stenostoma Rchb. f. 
Lindeni Van Houtte v. P. cau- 
datum (Ldl.) Pfitz. var. 
Lindleyanum (Schomb). Pftz. 
— var, Kaiïieteurum Cogn. 
lincolare Hort. v. P. bellatulum 
(Rchb. f.) var. lineatulum Hort. 
longifolium Pfitz. 
— var. gracile Hort., 
Hartwegii Rchb. f. 
Hincksianum Veitch. 
longisepalum Sand. v. P. insigne 
Pfitz. var. 


rubromarginatum Hort. 


— var, auriculatum Hort. 
magnifiorum Hort. v. P. longi- 
folium (Rchb. f.) Pfitz. 
Mastersianum (Rchb. f.) Pfitz. 
neoguinense (Linden) v. P. Rot- 
schildianum (Rchb. f.) Pftz. 
nigritum Hort. v. P.argus (Rchb. 
f.) var. nigricans Hort. 
nigrum Hort. v. P. Lawrencea- 
num (Rchb. f.) Pfitz. var. 
niveum (Rchb. f.) Pftz. 

— var. majus punctatum Hort. 
pardinum (Rchb. f.) Pftz. v. P. 
venustum (Wall.) Pfitz. var. 

Parishii (Rchb. f.) Pftz. 

Pearcei Hort.v.P.caricinum Ldl, 

Petri (Rchb. f.) Pfitz. v. P. 
Dayanum (Rchb. f.) Pfitz. 

praestans (Rchb. f.) Pfitz. v. P. 
glanduliferum (B1.) 

purpuratum (Ldi.) Pftz. 

reflexum Hort. v. P. callosum 

(Rchb. f.) Pfitz. 

Regnieri Rchb. f. v. P. concolor 
(Parish) Pftz. var. 

Reichenbachis Hort. v. P. longi- 
folium (Rchb. et Warsc.) Pfitz. 

reticulatum (Rchb. f.) v. P. Bois- 
sierianum (Rchb. f.) Pfitz. 

Ræbelenii (Rchb. f.) v. P. philip- 
pinense (Rchb. f.) Pftz. 

Reæzlii (Rgl.) Pfitz. v. P. longi- 
folium (Rchb. f.) Pftz. var. 
Hartwegii (Rchb. f.). 

roseum (Linden) v. P. caudatum 
(Ldi.) var. Warscewiczii 
(Rchb. f.) 

Rotschildianum (Rchb. f.) Pfitz. 

Sanderianum (Rchb. f.) Pfitz. 

Schlimii (Batem.). 

— var. albifiorum Linden. 

superbum Hort. 

Schomburgkianum (Klotzsch.) v. 
P. Klotzschianum (Rchb. f.). 

sinicum (Hance) v. P. purpura- 
tum (Ldl.) Pfitz. 

Spicerianum (Rchb. f.) Pftz. 

Stonei (Hook. f.) Pfitz. 

— var. platytaenium(Rchb. f.). 

superbiens (Rchb. f.) Pfitz. 

— var. Linden: Hort. v. P. su- 
perbiens (Rchb. f.). 

tonsum (Rchb. f.) Pftz. 

Veitchianum (Lind.)v. P. super- 
biens (Rchb. f.). 

venustum (Wall.) Pfitz. 

— var. pardinum Rchb. f, 

villosum (Ldl.) Pfitz. 

— var, albo-marginatum Hort, 


Paphiopedium 


AO 


Phajus amboinensis BI, 


villosum var. 
Rchb. f. 

Boxalli Rchb. f. 

atratum Hort. 

pallidum Hort. 

Lindeni Hort. 

—  superbum Hort. v.P. v. var. 

Boxalli Rchb. f. 

virens (Rchb. f.) v. P. javanicum 
(Reinw.) var. 

viridiflorum Hort, v. P. insigne 
(Wall) Pftz. 

vittatum (Vellozo) Pfitz. 

Volonteanam Sander v. P. Hoo- 
kerae (Rchb. f.) Pfitz. 

Wallisii Hort. v. P, caudatum 
(Lindl.) Pfitz. var. 

Warscewiczii (Rchb. f.) v. P. 
caudatum (Lindl.) Pfitz. var. 

Wittei Hort. v. P. Lawrencea- 
num (Rchb. f.) Pftz. 


aureum 


Pattonia Wight v. Grammatophyllum 


BI. 


Paxtonia Ldl. v. Spathoglottis BI. 
Pedilea Ldl. v. Microstylis Nutt. 
Pedilonum BI. v. Dendrobium Sw. 
Penthea Ldi. v. Disa Berg. 
Peramium Salisb. v. Goodyera R. Br. 
Peristeria Hook. 


aspersa Rolfe. 

Barkeri Batem. v. Acineta Bar- 
keri Ldi. 

cerina Ldl. 

elata Hook, 

guttata Knowl. et Westc. 


—  Humboldtii Batem. v. Acineta 
superba Rchb. f. 
—  pendula Hook. 
Pescatorea Rchb. f, 
—  Backhousiana Rchb. f. v. P. 


Klabochorum Rchb.f, var. 

bella Rchb. f. 

cerina Rchb. f. 

Dayana Rchb. f. 

— var. candidula Rchb. f, 

—  rhodacra Rchb. f. 

—  Roezlii Rchb. f. 

—  splendens Rchb. f. 

Gairiana Rchb. f. 

Klabochorum Rchb. f. 

— var. Backhousiana Rchb, f. 

lamellosa Rchb. f. 

Lehmanni Rchb. f. 

Roezlir Rchb. f. v. P. Payanum 
Rchb. f. var. 

Russeliana Rchb. f. 

Wallisii Lind. et Rchb. f, 


Pesomeria Ldl. v. Phajus Lour. 
Phajus Lour, 


albus Ldl,v. Thuniaalba Rchb, f, 


Augustintanus Klotzsch v. Ph, 
cupreus Rchb. f, 

australis F. Müll. v. Ph.Tanker- 
villiae BI. 

Bensoniae Hort. v. Thunia Ben- 
soniae Hook. f. 

Bernaysii Rchb.f. v. Ph, Blimei 
Ldl. var. 

bicolor Ldl, v. 
Ldl. var. 

Blumei Ldl. 

— var. Bernaysii Rchb. f. 

Carronii F, Müll, v. Phajus Tan- 
kervilliae BI. 

callosus Ldl, 

crispus Ldl. 

cupreus Rchb. f, 

Dodgsoni Hort. v. Thunia Dod- 
gsoni Will, 

flavus Ldl. 

flexuosus BI. 

giganteus Hort. v. P. Tanker- 
villiae. 

grandifolius Ldl. v. Ph. Walli- 
chii Ldl. 

grandifolius Lour. v. Ph. Tan- 
kervilliae BI, 

Humblotii Rchb. f. 

indigoferus Hassk. 

Kubhlii Breda. 

leucophaeus F. Müll. v. Ph. Tan- 
kervilliae BI. 

luvidus Hort. v. Ph. Wallichii 
Ldl. var. bicolor Ldi. 

maculatus Ldl. 

niveus Hort, v. 
Rchb. f, 

philippinensis N. E. Brown. 

Tankervillei BI. 

— var. intermedius Johns. 

—  superbus van Houtte. 

tuberculosus Rchb. f. 

Wallichii Ldil. 

— var. bicolor Veitch. 


Ph. Wallichii 


Thunia alba 


Phalaenopsis BI. 


amabilis BI. 

— var. aurea Rolfe. 

amabilis Hort. v. Ph. Aphro- 
dite Rchb. f, 

amethystina Rchb. f. 

antennifera Rchb. f, v. Ph. Esme- 
ralda Rchb, f. 

Aphrodite Rchb. f. 

— var, Dayana Will. 

gloriosa Veitch. 

Boxalli Rchb, f. 

Buyssoniana Rchb. f, v, P, Es- 
meralda Rchb, f, 


AE 


Phalaenopsis casta Rchb. f. 


Corningiana Rchb. f. 

Cornu cervi BI. et Rchb. f, v. 
Polychilos Cornu cervi Kubhl et 
Hass. 

Cynthia Rolfe v. Ph. leucorrhoda 
Rchb. f. var. 

equestris Rchb. f. v. Ph. rosea 
Ldl. 

Esmeralda Rchb. f. 

— var. candidula Rolfe. 

rubra Hort. 

gloriosa Rchb. f. v. Ph. Aphro- 
dite Rchb. f., var. 

grandiflora Ldl, v. Ph. amabilis 
BI. - 

Harriettae Rolfe v. Ph. Cornin- 
giana Rchb. f. 

intermedia Lal. 

— var, Brymeriana Rchb. f. 

Portei Rchb. f. 

leucorrhoda Rchb. f. 

— var. casta Rchb. f. 

Cynthia Rchb. f. 

Lobbii Paxt. v. Ph. intermedia 
Ldl. 

Lowii Rchb. f. 

Luddemanniana Rchtb. f. 

— var. delicata Rchb. f. 

hieroglyphica Rchb. f. 

ochracea Carr. 

pulchra Rchb,. f. 

maculata Rchb. f. 

Mannii Rchb. f. 

Mariae Burbidge. 

Micholitzii Sander. 

ochracea Carr. v. Ph. Luddeman- 
niana Rchb,. F. var. 

Parishii Rchb. f. 

Portei Rchb. f. v. Ph. intermedia 
Ldl. var. 

Regnieriana Rchb. f. v. Ph. Es- 
meralda Rchb. f. 

Reichenbachiana Sander. 

rosea Ldi. 

— var. leucaspis Rolfe. 

Schilleriana Rchb. f. 

— var. alba Hort. v. Ph. S. 

var. vestalis Rchb. f. 

immaculata Rchb. f. 

splendens Hort. 

vestalis Rchb. f. 

speciosa Rchb. f. 

— var. Christiana Rchb. f. 

Imperatrix Sand. 

Stuartiana Rchb. f. 

— var. bella Rchb. f. 

Hrubyana Rchb. f. 

nobilis Rchb. f. 

punctatissima Rchb, f. 


Phalaenopsis Sumatrana Korth. 
var. Kimballiana Rchb. f. 
paucivittata Rchb. f, 
sanguinea Rchb. f, 
—  tetraspis Rchb. f. 
—  violacea Teysm. et Binn. 
var. alba Teysm. 
Bowringiana Rchb. f. 
Murtoni Rchb. f. 
Schroederiana Rchb. f. 
—  Wightii Rchb. f. v. Doritis 
Wightii Rchb. f. 
—  gebrina Hook. v. Ph. Sumatrana 
Paxt 
Pholidota Lidl. 
—  articulata Ldi. 
—  carnea Ldl. 
—  corniculata Rchb. f, 
—  imbricata Ldl. 
—  rubra Ldil. 
—  suaveolens Ldl, 
—  Phreatia Ldl. 
Physosiphon Ldl. 
—  Loddigesii Ldl. 
Physurus L. C. Rich. 
— argenteus Loud. 
var. pictus Hort. 
—  fimbrillaris Ldi. 
—  maculatus Hook. 
—  nobilis Rchb. f. 
—  pictus Ldl. 
—  querceticolus Ldl. 
Pilumne T.d1l. v. Trichopilia Ldl. 
—  fragrans Ldl. v. Trichopilia 
fragrans Rchb. f. 
— Jaxa Ldi. v. Trichopilia laxa 
Rchb. f. 
—  nobilis Rchb. f. v. Trichopilia 
nobilis Rchb. f. 
Pinelia Ldi. v. Eria Ldl. 
Platanthera L. C. Rich. 
—  bifolia Rich. 
—  chlorantha Cust. v. P. montana 
Schm. 
—  gigantea Hook. v. Habenaria 
Suzannae Ldl,. 
—  incisa Ldl. 
— montana Schm. 
Platyclinis Benth. 
—  abbreviata Benth. 
—  Cobbiana Hemsl. 
—  cornuta Benth. 
—  filiformis Benth. 
—  glumacea Benth. 
—  uncata N. E. Brown. 
Pleione Don. 
—  Arthuriana Rcht. f. v. P. macu- 
lata Ldi. var. 
—  birmanica Rchb. f. v. P. praecox 
Don. var. Wallichiana Ldl. 


— 458 — 


Pleione concolor Hort. v. P. praecox 

à Don. var. 

—  Hookeriana Moore. 
var. brachyglossa Rchb. f. 
—  humilis Don. 
var. albata Rchb. f. 
tricolor Rchb. f. 

—  Lagenaria Ldl. 

—  maculata Ldi. 

var. Arthuriana Rchb. f. 
—  praecox Don. 

var, concolor Hort. 

_— Wallichiana Ldl. 

—  Reichenbachiana Moore. 

—  Schilleriana Rchb. f. 
Pleuvanthium Ldl. v. Epidendrum L. 
Pleurothallis R. Br. 

—  atropurpurea Ldl. v. Cryptopho- 

ranthus atropurpureus Rolfe. 

—  Barberiana Rchb. f. 

—  coccinea Hort. v. 

secunda H. B. K. 

— Colibri Hort. v.P. ornata Rchb.f. 

—  fenestrata Ldi. v. Cryptophoran- 

tus atropurpureus Rolfe. 

—  glossopogon Hort. v. P. insignis 

Rolfe. 

—  hemirhoda Ldl, 

—  Grobyi Ldl. 

— _insignis Rolfe. 

—  laurifolia Rchb. f, v. P. Roezlii 

Rchb. f. 

—  leucopyramis Rchb, f. 

—  longissima Ldl. 

—  ornata Rchb. f. 

—  picta Ldl. 

—  prolifera Herb. 

—  punctataR. Br. v. Notylia punc- 

tata Ldl. 
—  purpurea Ldi. v. Bulbophyllum 
Carreyanum Spr. 

— punctulata Rolfe. 

—  Regeliana Rchb. f. 

—  Roezlii Rchb. f. 

—  ruscifolia R. Br. 

—  saurocephala Lodd. 

—  scapha Rchb. f. 

—  surinamensis Focke v. P. picta 

Ldl. 

—  teres Ldl, 

— vittata LdI. 
Polychilos Kuhl et Hass. 

— Cornu cervi Kuhl et Hass. 
Pogochilus Falc. v. Galeola Lour. 
Polycycnis Rchb. 

—  barbata Rchb. f. 

— _ gvatiosa Endr. et Rchb. f. v. P. 

lepida Linden var. 

—  lepida Linden et Rchb. f. 
var. gratiosa Endr.et Rchb.f. 
—  muscifera Rchb. f. 


Rodriguezia 


Polystachya Hook. 

— bracteosa Ldi. 

—  hemirrhoda Ldi. 

—  luteola Hook. 

—  puberula Ldi. 

—  pubescens Rchb. f. 

—  rufinula Rchb. f. 
Pomatocalpa Kuhl et Hass. v. Cleisos- 

toma BI. 

Ponera striata Ldil. 
Preptanthe Rchb. f. 

—  Regnieri Rchb. f. 
var. fausta Rchb. f. 
nivalis Hort. 
Sanderiana Hort. 
Stevensii Hort. 
Turneri Rchb. 
Williamsii Will. 
—  Standhurstiana Hort. 
— vestita Rchb. f. 
var. gigantea Will. 
grandiflora Lind. v. P. 

v. var. giganteaWill, 
— _igneo-oculata Rchb. f. 
luteo-oculata Rchb. f. 
_ rubro-oculata Paxt. 

—  Wälliamsii Rchb. f. v. P. Re- 

gnieri Rchb, f. var. 

Prescottia Ldi. 

—  colorans Ldl, 

—  plantaginea Ldi. 
Promenaea Ldl. 

—  citrina Ldl. 

—  microptera Rchb,. f. 

—  Rollissonii Ldl. 

—  stapelioides Ldl. 
Prosthechea Kuowl. et Westc. v. Epi- 


dendrum L, 

Psittacoglossum LI. et Lex. v. Maxil- 
lariaR. P. 

Psychechilus Kuhl et Hass. v. Zeuxine 
Ldl. 


Ptevoceras Hassk. v. Sarcochilus R. Br. 
Pterochilus Hook. et Arn. v. Microstylis 
Nutt. 
Ptilocnema Don v. Pholidota Ldi. 
Renanthera Lour. 
—  Ayachnites Lour. v. 
aëris Rchb. f. 
—  coccinea Lour, 
—  elongata Lour. 
—  Flos aëris Rchb. f. 
—  Lowii Rchb. f. 
var. Rohdeniana Benth. 
—  matutina Ldi. 
var. micrantha Ldi. 
—  micrantha Ldi. v. R. matutina 
var. micrantha Ldl. 
—  Storiei Rchb. f. 
Restrepia H. B. K. 
—  antennifera H. B.K, 


R. Flos 


= AIN 
Rodriguezia pubescens Rchb. f. 


Restrepia Dayana Rchb. f. 


elegans Karsten. 

guttata Ldl. v. R. antennifera 
FE. K 

Lansbergii Bot. Mag. v. R. xan- 
thophtalma Rech. f. 

maculata Linden v.R. antennifera 
EH B K 

pandurata Rchb. f. 

punctulata TLdl. v. 
Karst. 

vittata Ldl. v. Pleurothallis vit- 
tata Ldl. | 

xanthophtalma Rchb. f. 


R. elegans 


Rhynchopera KI. v. Pleurothailis R. Br. 
Rhynchostele Rchb. f. v. Oncidium Sw. 
Rhynchostylis BI. 


Blumei Hort. v.R. retusa Rchb.f. 

cælestis Rchb. f, 

guttata BI. v. KR. 
var. 

praemorsa Ldl. v. RK. 
Rcht. f. 

retusa Rchb. f. 

guttata Ldl. 

furcata Hort. 

gigantea Hort. 

Holfordiana Will. 

— var. major Rchb. f. 

—  Ruasseliana Will. 

Turneri Will. 

violacea Rchb. f. 

— var. Berkeleyi Rchb. f. 

— var. Harrisoniana Will. 


retusa Bl. 


retusa 


Robiquetia Gaud. v. Saccolabium Bl. 
Rodriguezia Ruiz et Pavon. 


Barkeri Hook. v.Gomeza Barkeri 
Benth. 

Batemanni Hort. v. R. candida 
Hook. var 

candida Bat. 

— var. Batemanni Hort, 

Farmeri Hort. 

crispa KI. et Rchb. f. 

crispa Hook. v. Gomeza crispa 
Lodd. 

decora Rchb. f. 

— var. picta Hook. 

Farmeri Hort. v. KR. candida 
Rchb. f. var. 

fragrans Rchb. f, 

Knowlesii Hort. v. R. venusta 

.. Rchb. f. var. 

lanceolata Hook. v. R. secunda 
HER: 

Leeana Ladl. 

Lindeni Cogn. 


.maculata Rchb. f, 


planifolia Ldi. v. Gomeza plani- 
folia KI, 


secunda H. B. K. 
venusta Rchb. f. 
— var. Knowlesii Hort. 


Saccochilus BI. v. Saccolabium Bl. 
Saccolabium Bl. 


acutifolium Ldi. 

ampbullaceum Ldl. 

— var. Moulmeinense Hort. 

bellinum Rchb. f. 

Berkeleyi Rchb. f. v. Rhyncho- 
stylis violacea Rchb. f. var. 

bigibbum Rchb. f. 

Blumei Ldl. v. Rhynchostylis 
retusa BI. 

calceolare Ldi. 

cæleste Rchb. f, v. Rhynchostylis 
cœlestis Rchb. f. 

curvifolium Ldl. 

— var. luteum Hort. 

densiflorum Ldl. v. S. giganteum 
Ldi. 

denticulatum Paxt. v. S. acuti- 
folium Ldl. 

furcatum Hort. v. Rhynchostylis 
retusa BI. var. 

giganteum Ldl. 

— var. illustre Rchb. f. 

Petotii Rchb. f. 

guttatum Ldl. v. Rhynchostylis 
retusa BI. var. 

Harrisonianum Will. v. Rhyn- 
chostylis violacea Rchb. f. var. 

Hendersonianum Rchb. f. 

Huttoni Hook. v. Aerides Thi- 
bautianum Rchb. f. 

illustre Rchb. f. v. S. giganteum 
Ldl. var. 

miniatum Hook. v.S.curvifolium 
Ldl, 

miniatum Ldl. 

— var. citrinum Will. 

Mooreanum Rolfe. 

praemorsum Hort. v. Rhynchos- 
tylis retusa BI. 

retusum Hort. v. Rhynchostylis 
retusa BI, 

Rheedii Wight 
retusa BI. 

rubrum Ldl. 
Ldl. 

rubrum Wight v. Aerides radi- 
cosum À. Rich. 

Tuyneri Will. v. Rhynchostylis 
retusa BI. var. 

violaceum Ldl. v. Rhynchostylis 
violacea Rchb. f. 

Wightianum Ldl. v. Aerides 
radicosum À, Rich. 

—  Hort, v.sS. curvifolium Ldl. 


v. Rhynchortylis 


v. S. curvifolium 


EE 


Sarcanthus Ldi. 
—  filiformis Ldl. 
—  gutlatus Ldl. v. Rhynchostylis 
retusa BI, var. 
—  paniculatus Ldl. 
—  recurvus Ldi. 
—  rostratus Ldl,. 
—  succisus Ldi. 
—  teretifolius Ldi. 
Sarcochilus R. Br. 
—  Berkeleyi Hook. f, 
— Calceolus Li. 
—  falcatus R. Br. 
—  Fitzgeraldi F. v. Muell. 
—  Hartmanni F. v. Muell. 
—  luniferus Hook. f. 
—  olivaceus Ldl. 
—  purpureus Benth. v. Camarotis 
rostrata Rchb. f. 
Sarcoglossum suaveolens Hort. v. Cir- 
rhaea dependens Rchb. f. 
Sarcopodium Lobbii Ldl. v. Bulbophly- 
lum Lobbii Ldl. 
—  Tryeacherianum Ldl. v. Dendro- 
bium Treacherianum Rchb, f, 
Satyridium Ldl, v. Satyrium Sw. 
Satyrium Sw. 
— _ albidumL. v. Gymnadenia albida 
Rich. 
—  aurantiacum Hort. 
—  aureum Paxt. 
—  candidum Hook. f. 
_—.—. Carneum R. Br. 
—  coriifolium Sw. 
—  cucullatum Sw. 
—  erectum Sw. 
—  grandiflorum Sw. v. Disa gran- 
diflora L.. 
—  nepalense Don. 
— nigrum L. v. Nigritella nigra 
Rchb. f. 
Scaphosepalum Pftz. 
—  ochthodes (Rchb. f.) Pftz. 
—  verrucosum (Rchb, f.) Pfitz. 
Scaphyglottis Poepp. et End. 
—  Kienastii Benth. 
—  violacea Ldi. 
Schlimmia Planch. 
—  jasinodora Planch. et Linden 
v. S. trifida Rchb. f. 
—  trifida Rchb. f. 
Schomburgkia Ldl. 
—  crispa Ldl. 
—  Humboldtii Rchb. f. 
—  Lyonsii Ldi. 
—, mavginata Hook. v. S. crispa 
Ldl. 
—  Thomsoniana Rchb. f. 
—  Tibicinis Batem. 
var. grandiflora Will. 
—  undulata Ldi. 


Scleropteris Scheidw. v. Cirrhaea Ldl. 
Scuticaria Ldi. 
—  Dodgsoni Will. v. S. Hadwenii 
Benth. var. 
—  Hadwenii Benth. 
— — var. de Kayzeriana Hort. 
— — — Dodgsoni Will. 
—  Steelei Ldl. 
Selenipedium Pftz. 
—  Chica Rchb. f. 
—  palmifolinm Rchb. f. 
Serapias L. 
—  cordigera L. 
—  Lingua L, 
—  longipetala Pollin. v. S. pseudo- 
cordigera Mor. 
— pseudocordigera Mor. 
—  sSpeciosa Sw. v. Stenorrhynchus 
speciosus Ldl. 
Sestochilus Kuhl et Hass. v. Bulbophyl- 
lum Thou. 
Siagonanthus Poepp. et Endl. v. Orni- 
thidium Salisb. 
Sievekingia Rchb. f. 
—  suavis Rchb. f. 
Sigmatostalix Rchb. f, 
—  radicans Rchb. f. 
Sobralia Ruiz et Pavon. 
—  Bletia Rchb. f. 
—  chlorantha Hook. 
—  citrina Llav. et Lex. v. Cattleya 
citrina Ldl. 
—  decora Bat. 
—  dichotoma KR. et P. 
— Elisabethae Ldl. 
—  fragrans Ldi. 
—  Kienastiana Hort. v. S. macran- 
tha Ldl. var. 
—  labiata Ldl. v. S. rosea Poepp. 
et Endl. 
—  leucoxantha Rchb, f. 
—  Liliastrum Ldl. 
—  Lindleyana Rchb. f. 
—  macrantha Ldl, 
var. albida Hort. 
Kienastiana Rchb. f. 
nana Hort. 
— — —  pallida Hort. 
M — —purpurea HOrt: 
ne LOSC A HOT: 
splendens Hort. 
Wooleyi Hort. v. S. m. 
var. splendens Hort. 
—  macrophylla Rchb. f. 
— rosea Poepp. et End. 
—  Ruckeri Linden v.S. rosea Poepp. 
et Endl. 
—  sessilis Ldi. v. Epistephium Wil- 
liamsii Hook, 
—  violacea Ldl. 


jar — 


Sobralia Warscewiczii Rchb. f. 


xantholeuca Rchb. f. 
var. alba Veitch. 


Sophronia cernua Hort. v. Sophronitis 


cernua Ldl. 


Sophronitis Ldl. 


cernua Ldl. 

coccinea Rchb. f. v. S. grandi- 
flora Ldl. var. 

grandiflora Ldl. 

— var, aurantiaca Hort. 

coccinea Van Houtte. 

gigantea Hort. 

purpurea Veitch. 

rosza Hort. 

Hoffmannseggii Rchb. f. v.sS. 
cernua Ldl. 

militaris Rchb. f. v. S. grandi- 
flora Läl. 

nutans Rchb. f. v.S. cernua Ldl. 

purpurea Rchb. f. v. S. grandi- 
flora Ldi. var. 

violacea Läl. 


Spathoglottis BI. 


Angustorum Rchb. f. v. S. 
Vieillardi Rchb. f. 

aurea Ldl. 

Fortunei Ldil. 

Kimballiana Hort. v. S. aurea 


Lobbii Rchb. f. 

pacifica Hort. v. S. aurea Ldl. 
Paulinae F. v. Muell, 

Petri Rchb. f. 

plicata BI. 

plicata Hort. v. S. aurea Ldl. 
pubescens Ldl. 

rosea Hort. v. S. Petri Rchb. f. 
Vieillardi Rchb. f. 


Specklinia Ldl. v. Pleurothallis R. Br. 


atroburpure.: Lal. v. Cryptopho- 
ranthus atropurpureus Rolfe. 


Spiranthes L. C. Rich. 


acaulis Sm. v. Sp. picta Ldl. 

aestivalis Rich. 

australis Rich. 

autumnalis Rich. v. Sp. spiralis 
C. Koch. 

bicolor Ldl. 

bracteosa Ldl. 

coloratus N. E. Br. v. Stenor- 
rhynchus speciosus L. C. Rich. 

gracilis À. Gr. 

picta Ldl. 

spiralis C. Koch. 


Stanhopea Frost. 


amæna Klotzsch v. S. Wardii 
Lodd. 

aurantjaca Ldl. 

aurea Ldil. v. S. Wardii Lodd. 
Var, 


Stanh 


Stanh 


opea Bucephalus Ldi. 

var. guttata Ldl. 

cirrhata Ldl. 

Devoniensis Ldl. 

eburnea Ldl. 

var. nivea Hort. 

spectabilis Lem. 

ecornuta Rchb. f. v. Stanhopea- 
strum ecornutum Rchb. f. 

flava Ldi. v. S. insignis Frost 
Var. 

Fregeana Rchb. f. 

gibbosa Rchb. f. v. S. Wardii 
Lodd. 

grandiflora Ldil. v. S. eburnea 
Ladl. 

graveolens Ldl. 

var. aurea Reg. 

inodora Reg. 

Lietzei Reg. 

guttata Ldl. v. S. Bucephalus 
Ldl. var. 

implicata Hook. v. S. Martiana 
Ldl 


inodora Ldl. 

insignis Frost 

var. flava Ldl. 

Jenischiana Kramer. 

Lindleyana Hort. v. S. oculata 
Ldl. var. 

maculata Hort. v. S. Devonien- 
sis Ldl. 

maculosa Hort. v. S. Devoniensis 
Ldl. 

Martiana Ldl. 

var. bicolor Hook. 

nivea Hort. v. S. eburnea Ldi. 
Var. 

oculata Ldl. 

var. aurea Hort. 

Barkeriana Hort., v. 
S. o. var. Lindleyana 
Hort. 

croceza Reg. 

guttulata Rchb. f. 

Lindleyana Hort. 

platyceras Rchb. f. 

quadricornis Ldl. 

Ruckeri Ldl. 

saccata Bat. 

Shuttleworthii Rchb. f. 

tigrina Batem. 

var, aurea Hort. 

grandiflora Hort. 

lutescens Will. 

nigro-violacea Morr. 

superba Hort. v. St. t. 
var.grandiflora Hort. 

Wardii Lodd. 

var. aurea Ldi. 

opeastrum Rchb. f. 


Stanhopeastrum ecornutum Rchb. f. 
Stauritis violacea Rchb. f. v. Phalae- 
nopsis violacea Teysm.et Binn. 
Stauroglottis Schauer v.Phalaenopsis BI. 
—  equestris Schauer v. Phalaenop- 
sis rosea Ldl. 
Stauropsis fasciata Benth. v. Tricho- 
glottis fasciata Rchb. f. 
—  gigantea Benth. v. Vandopsis 
gigantesa Pfitz. 
—  lissochiloides Benth. v. Vandop- 
sis lissochiloides Pfitz. 
Stelis Sw. 
—  Bruckmülleri Rchb. f. 
—  micrantha Sw. 
—  ophioglossoides Sw. 
—  tristyla Ldl, 
Stenia LdI. 
—  Beaumontii Ldl. v. Galeottia 
Beaumontii Rich. 
— _ fimbriata Ldl.v.Chondrorhyncha 
fimbriata Rchb. f. 
—  guttata Ldl. 
—  pallida Ldl. 
Stenocoryne Ldl. v. Bifrenaria LdI. 
Stenorrhynchus L. C. Rich. 
—  Cinnabarinus Ldi, 
Speciosiis LC. Rich. 
Sturmia Rchb. v. Liparis L. C. Rich. 
Séyloglossum Kuhl et Hass. v. Calanthe 
R. Br. 
Synptera Llan. v. Cleisostoma Bl. 
Tainia BI. 
2="Nbarbata La, 
—  bicornis Benth. 
—  fimbriata Teysm. 
—  latifolia Benth. 
‘ —  speciosa BI. 

—  Stellata Pftz. 
Talpinaria Karsten v. 
R. Br. 

Tankervillia Lk v. Phajus Lour. 

Taurostalix Rchb. f. v. Bulbophyllum 
Thou. 

Telipogon H. B. K. 

Tetramicra Ldi. v. Brassavola R Br. 
—  bicoloy Ldil. v. Leptotes bicolor 

Ldl. 
Thiebautia Colla v. BletiaR. et P. 
Thrixshpermum Lour. v. Sarcochilus R. 


Pleurothallis 


Fe. 
Thunia Rchb. f. 
— alba Rchb. f. 
— — var. Dodgsoniana Will. 
— — — flavotincta Hort. v. T. 
a. var. Dodgsoniana. 
— — —  nivalis Hort. 
— Bensoniae Rchb. f. 
—  Dodgsoniana Will. v. Th. alba 
Rchb. f. var. è 
—  Marshalliana Rehb. f, 


Thunia Marshalliana var. ionophlebia 
Rchb. f. 
—  #ivalis Hort. v. Th. alba Rchb. 
£ Var. 
—  Wrigleyana Will. v.Th. ;* Veit- 
chiana Rchb. f. 
Tipularia Nutt. 
—  discolor Nutt. 
Titania Endl. v. Oberonia Ldl. 
Traunsteinera Rchb. v. Orchis L. - 
Trias Ldl. 
—  oblonga Ldl. 
—  picta Benth. 
Tribrachia Ldl. v. Bulbophyllum Thou. 
—  purpurea Ldl, v. Bulbophyllum 
Careyanum Spreng. 
Trichocentrum Poepp. et Endl. 
— albo-purpureum Rchb. f. 
— —  var.striatum Hort., 
—  fuscum Ldi. 
—  maculatum Ldl. 
— _ orthoplectron Rchb. f, 
—  Pfavii Rchb. f. 
— _ porphyrio Rchb. f. 
—  tigrinum Linden et Rchb. f. 
— — var. splendens Lind. 
—  triquetrum Rolfe. 
Trichoglottis BI. 
—  fasciata Rchb. f. 
Trichopilia Ldl. 
— alba Linden v.T.suavis Ldl. var. 


—  albida Wendl. 

—  candida Batem. v. T. fragrans 
Ldl. : 

—  coccinez Lem. v. T. marginata 
Henfr. 


—  coccinea Ldl. 

— — var.crispa E. Morr. v. T. 
crispa Ldi. 

—  crispa Ldl. 

— — var. lepida Veitch. 

— — —  marginata Warn. 

—  fragrans Rchb. f. 4 

— — var. grandiflora Hort. v.T. 
nobilis Rchb. f. 

— — — nobilis v. T. nobilis 

Rchb, f. 

—  Galeottiana A. Rich. 

—  hymenantha Rchb. f. 

—  laxa Rchb.f. 

—  Lehmanni Rgl. 

—  lepida Veitch v.T. crispa Ldl. 

var. 

—  marginata Henfrey. 

—  — var. flaveola Hort, v. var. 
olivacea Rchb.f. 

— — —  olivacea Rchb.f.. 

— nobilis Rchb.f. 

—  picta Lem. v. T., Galeottiana 

A. Rich. 
—  punctata Rolfe, 


— 463 — 


Vanda lamellata Ldi. 


Trichopilia rostrata Rchb. f. 
—  sanguinolenta Rchb. f. v. Helcia 
sanguinolenta Ldl. 
—  suavis Ldi. 
var. alba Linden. 
grandiflora Hort. 
superba Hort. v. T. ss. 
var.grandiflora Hort. 
—  tortilis Ldi. 
—  — var. candida Linden et 
Rchb. f. 
—  WarscewicziiK1.v.T.crispa Ldl. 
Trichosma Ldl. 
—  suavis Ldi. 
var. bella Hort. v. T. s. var. 
Tautziana Rchb.f. 
Tautziana Rchb. f. 
Trichotosia BI. v. Eria Ldl. 
Trigonidium monophyllum Griseb. v. 
Octadesmia monophylla Benth. 
Tripleura Ldl. v. Zeuxine Ldi. 
Tussaca Raf. v. Goodyera R. Br. 
Tylochilus Nees v. Cyrtopodium R. Br. 
Le ris Lindeni Ldi. v. Paphiope- 
dium caudatum var. Pfitz. 
var. delicatum Hort. v. Pa- 
phiopedium caudatum Pfitz. 
var. Wallisii Veitch. 
Vanda R.-Br. 
—  alpina Ldl. 
—  Amesiana Rchb. f. 
—  Batemani Ldi. v. Vandopsis lis- 
sochiloides Pftz. 
—  Bensonii Batem. 
—  Boxallii Rchb. f. v. V. cœrules- 
cens Griff, var. 
- —  Cathcartii Ldl. v. 
Cathcartii Rchb. f. 
—  Clarkei Hort. v. Esmeralda Clar- 
kei Rchb. f. 
—  cœrulea Grif. 
— cœærulescens Griff, 
var. Boxallii Rchb. f. 
Lowiana Rchb. f. 
Vipani Rchb. f. 
—  concolor BI. 
— _cristata Ldi. 
—  Denisoniana Benson et Rchb. f. 
var. hebraica Rchb. f. 
punctata Hort. 
— dns R. Br. v. Saccolabium 
giganteum Ldl. 
—  furva Ldl. v. V. concolor BI. 
—  gigantea Rchb. f. v. Vandopsis 
giganlea Pfitz. 
—  Griffithii Ldl. v. V. alpina Ldl. 
—  hastifera Rchb. f. 
—  Hookeriana Rchb. f. 
— insignis BI. 
var. Schrœderiana Rchb. f. 
—  Kimballiana Rchb. f. 


Esmeralda 


— var. Boxallii Rchb. f. 

limbata BI. 

Lindeni Rchb. f. 

Lindleyana Griff. v. Vandopsis 
gigantea (Rchb. f.) Pfitz. 

lissochiloides Gaud. v. Vandopsis 
lissochiloides Pfitz. 

Lowii Ldl.v.Arachnanthe Lowii 
Rchb. f. 

multiflora Ldl. 

Parishii Rchb. f. 

— var. Marriottiana Rchb. f. 

parviflora Ldi. 

peduncularis Ldl. v. 
peduncularis Rchb. f. 

recurva Hook. v. Sarcanthus re- 
curvus Ldl. 

Rohdeniana Hort. v. Renanthera 
Lowii Rchb. f. var. 

rostrata Lodd.v.Sarcanthus ros- 
tratus Ldi. 

Roxburghii R. Br. 

— var. cœrulea Hort. 

unicolory Hook. v. V. 
concolor BI. 

Sanderiana Rchb.f. 

— var. labello viridi Lind. 

Stangeana Rchb. f. 

striata Rchb.f.v.V.cristata Ldl. 

suaveolens BI. v. V. tricolor Ldi. 

suavis Ldl. 

— var. flava Ldi. 

Gottschalckei Will. 

teres Ldi. 

— var. Andersoni Will. 

Aurora Rchb. f. 

candida Rchb. f. 

teretifolia Ldl. v. Sarcanthus 
teretifolius Ldli. 

tessellata Paxt. v. V. Roxburghii 
R20PE. 

tesselloides Rchb. f. v. 
burghii R. Br. 

testacea Rchb. f. v. V. parviflora 
Lal. 

tricolor Ldi. 

— var. aurea Hort. 

cinnamomea Hort. 

Corningii Will. 

Dodgsonii Will. 

formosa Veitch. 

insignis Hort. 

nivea Hort. 

pallida Hort. 

Patersonii Rchb. f. 

planilabris Ldi. 

praetexta Godefr. 

Russeliana Hort. 

suavis Rehb. f. v. V. 
suavis Ldi. 


Cottonia 


V. Rox- 


= 


Warscewiczella Wendlandi var. discolor 


Vanda tricolor var. suavissima Hort. 


Warneri Will. 

unicolor Hort. v. V. concolor BI. 

violacea R. Br. v. Rhynchostylis 
violacea Rchb, f. 

Vipani Rchb. f, 

Wightiana Ldl. v. V. multiflora 
Ldl. 


Vandopsis Pfitz. 


gigantea Pfitz. 
lissochiloides Pftz. 


Vanilla Sw. 


aphylla Hort. v. V. Phalaenop- 
sis Rchb. f. 

aromatica Sw. 

bicolor Ldl. 

claviculata Sw. 

Efpidendrum Hort. v. V. aroma- 
tica Sw. 

mexicana Hort. v. V. aromatica 
Sw. 

Phalaenopsis Rchb. f, 

planifolia Andr. 

sativa Ldil. v. V. planifolia Andr. 

viridifiora B1l. v. V. planifolia 
Andr. 


Warrea Ldl. 


bidentata Ladl.v. W. tricolor Ldl,. 
var. 

candida Ldl. v. Warscewiczella 
candida Rchb. f. 

cyanea Ldi. v. Aganisia cyanea 
Benth. 

discoloy Ldl. v. Warscewiczella 
Wendlandi Rchb. f. 

Lindeniana Henfr. v. W. tricolor 
Ldi. var. bidentata. 

marginata Ldl. v. Warscewic- 
zella marginata Rchb. f. 

quadräta Batem. v. Warscewic- 
zella quadrata Rchb. f. 

tricolor Ldl. 

— var. bidentata Ldl. 

Wailesiana Lidl. v. Warscewic- 

zella Waiïlesiana Rchb. f. 


Warscewiczella Rchb.f. 


aromatica Rchb. f. 

candida Rchb. f. 

cochlearis Rchb. f. 

discolor Rchb. f.v. W.Wendlandi 
Rchb. f. var. 

Gibeziae Rchb. f, 

marginata Rchb. f. 

— var, vestalis Rchb. f. 

picta Rchb. f. 

quadrata Rchb. f. 

velata Rchb. f. et Warsc. 

violacea Rchb. f. v. Bollea viola- 
cea Rchb. f. 

Wailesiana Rchb. f, 

Wendlandi Rchb. f, 


Rchb. f. 


Xiphosium Griff. v. Eria Ldl. 
Xylobium Ldi. 


decoloratum Ldi, 
foveatum Ldl. 
pallidiflorum Hook. 
squalens Ldl. 


Zeuxine Ldl. 


regia Benth. 


Zygoglossum Reinw. v. Cirrhopetalum 


Ldl. 


Zygopetalum Hook. 


africanum Bot. Mag. v. Odonto- 
glossum bictoniense Ldl. 

aromaticum Hook. v. Warscewic- 
zella aromatica Rchb. f, 

Backhousianum Hook. v. Pesca- 
torea Klabochorum Rchb. f, 
var. 

bellum Hook. v. Pescatorea bella 
Rchb. f. 

brachypetalum Ldl. 

Burkei Rchb. f. 

Burtii Benth. v. Huntleya Burtii 
Bat. 

candidum Rchb. f. v. Warcewic- 
zella candida Rchb. f. 

cevinun Rchb. f. v. Pescatorea 
cerina Rchb. f. 

Clayi Rchb. f. 

cochleare Ldl. v. Warscewic- 
zella cochlearis Rchb. f, 

crinitum Lodd. 

— var. cœruleum Hort. 

roseum Hort. 

Dayanum Benth. v. Pescatorea 
Dayana Rchb. f. 

flabelliforme Ldl. v. Warscewic- 
zella cochlearis Rchb. f. 

Gairianum Hook. v. Pescatorea 
Gairiana Rchb. f. 

Gautieri Lem. v. Z. maxillare 
Lodd. var. 

Gautieri H. Sander v. Z. Sande- 
rianum Rgl. 

Gibeziae N.E. Br. v. Warscewic- 
zella Gibeziae Rchb. f. 

gramineum Ldl. v. Keferstei- 
nia graminea Rchb. f. 

graminifolium Rolfe. 

grandiflorum Benth. v. Galeot- 
tia grandiflora Rich. 

intermedium Ldl. v. Z. Ma- 
ckayi Hook. 

Klabochorum Rchb. f. v. Pesca- 
torea Klabochorum Rchb. f. 
Lalindei Rchb. f. v. Bollea La- 

lindei Rchb. f. 
lamellosum Benth. v. Pescatorea 
Jlamellosa Rchb. f, 


4 


Zygopetalum Russelsanum Hook. +. 


Zygopetalam Lehmann: Rchb. f. v. 


Pescatorea Lehmanni Rchb. f. 

Lindeni Rolfe. 

Mackayi Hook. 

var.crinitum Lal. v. Z.cri- 

nitam Lodd. 
intermedium Rchb. f. 

marginatum Rchb. f. v. Warsce- 
wiczella marginata Rchb. f. 

maxillare Lodd. 

var. Gautieri Reg. 

Meleagris Benth. v. Huntleya 
Meleagris Ldl. 

micropterum Hook. v. Promenaea 
microptera Rchb. f. 

Murrayanum Gardn. v.Z. Mac- 
kayi Hook. 

Roezlsi Hort.v.PescatoreaDayana 
Rchb. f. var. 

rostratum Hook. v. Zygosepalum 


Pescatorea Russeliana Rchb. f. 
Sanderianum Rgl. 
Sedeni Rchb. f, 
stapelioides Rchb. f. v. Prome- 
naea stapelioides Ldl. 
velaium Hook. v. Warscewiczella 
velata Rchb. f. et Warsc. 
velutinum Hofm. v. Z. Mackayi 
Hook. var. intermedium Rchb.f. 
violaceum KRchb. f. v. Bollea 
violacea Rchb. f. 
Wailesianum Rchb. f. v. Wars- 
cewiczella Wailesiana Rchb. f. 
Wallisii Hook. v. Pescatorea 
Wallisii Lind. et Rchb. f. 
Wendlandi Hook. v. Warsce- 
wiczella Wendlandi Rchb. f. 
xanthinum Rchb. f. 


Zygosepalum Rchb. f. 


rostratum Rchb. f. 


LISTE DES PRINCIPALES ORCHIDÉES HYBRIDES(1). 


Aerides Dominyi . 

— hybridum . . 
Anacamptis Durandi!2) 
Anacamptorchis fallax (3). 


Anguloa media(4) . 
Calanthe Dominyi. 
— Rollissonii . 
Calanthidio-preptanthe por. | 
phyrea 


— — Jentiginosa . . .| 


Cattleya Aclandi-Loddigesii. | 
(5) 

— Arthuriana 
— Ashtoniana . 
— Ballantiniana 


7e 


À. affine X A. Fieldingii. 
A. affine X A. Sun Es 
? 


.| Anacamptis py ramialie X Orchis 


ustulata. 
A. Clowesii X A. Ruckeri 
C. Masuca X C. furcata. . 
C. veratrifolia X C. Masuca 


.| Calanthidium labrosum X Prep- 


tanthe vestita rubro-oculata. 

C. labrosum X Limato-Preptan- 
the Veitchii. 

C. Loddegesii X C. Aclandiæ . 


C. intermedia X C. superba. 
C. Dormaniana X C. luteola 


C. Harrisoniae X C. Warscewiczii. 
.| Sander. 


C. Trianae X C. Warscewiczii . 


rostratum Rchb. f. 


- |[Veitch. 


.|Veitch. 
.| France. 
France. 


.|Veitch. 
.|Veitch. 
. Rollisson. 


Lawrence. 
| 
Veitch. 


.|Veitch. 
| 


.|Perrenond. 
PE. 


Lewis, 


(1) La première colonne contient le nom des hybrides; dans la seconde, se trouvent 
indiqués les parents; enfin la patrie des hybrides naturels ou le nom de l'obtenteur 


des hybrides horticoles ou de l'horticulteur qui les a mises au commerce se trouvent, 
autant que possible, insérés dans la troisième colonne. 
(2) Syn. Aceras Duquesnii. — (3) Syn. Anacamptis fallax. 
(4) Syn. Anguloa intermedia Bowring. — (5) Syn. Cattleya Brabantiae. 


Cattleya Brymeriana. 


Burberryana 
calummata . 


Chamberlainiana 


Chloris 
citrino- orne. 
decoruma 


Dominyana . 
fimbriata 
flaveola 
Hardyana 


— var. Cd 


— — [Laversinensis .!. 


— — Statteriana . 


Harold 
Harrisii . 


hybrida . , 
— var. picta 
intricata 
Johnsoniana. 
Krameriana. 
Lord Rothschild 
Lowryana . . 
Manglesii 


Mastersoniae 
Measuresii 
Minucia . 
Miss Harris, 
Mitchelli. 
Parthenia 
Patrocinii 


Pheidonàa. 
Philo. 


— var. albiflora . 


picturata. 
porphyrophlebia 
Prince of Wales 


quincolor 
resplendens . 
scita 

Sororia 

suavior 

venosa ae 
Wendlandiana . 


- William Murray 


Éhyai Chelsoni 
— Sedeni 
Cœæloglossum Erdingerit:) 


. 
=; 


. 


Cymbidium armainvilliense . 
— eburneo - Lowianum . 


bo 


C. superba X C, labiata Eldorado.|Hyb. nat. 


C. intricata X C. superba 


.| Sander. 


C. intermedia amethystina X C. |Bleu. 


Mendelii. 


. intermedia X C. Forbesii . . 
. GaskellianaXC.Dowiana aurea. 


O"N'AQGIOIO 


Aclandiae, 
C. guttata Leopoldi X C. labiata | Veitch. 
Dowiana. 
C. Bowringiana X C. maxima . .|Veitch. 
C. intermedia X citrina. . .| Harris. 
C. Sallieri Hyeana X C. ee ]J. Hye. 
ceana. 
C. intermedia X C. superba. .|[Veitch. 
C. intermedia X C. Aclandiae . .|Bleu. 
C. intermedia X C. guttata . .|Backhouse. 
C. aurea X C. labiata Warscewiezii| Nouvelle Grenade. 
Ti M lintuen: 
. .|Linden. 
DER ne Te | Pindens 
C. Gaskelliana X C. Warscewiczii.| Cookson, 
C. guttata Leopoldi X C. labiata | Harris. 


APIPAS QC aurER EG Vince: 
. guttata X C. intermedia . .|Veitch. 

. guttata X C. intermedia. ,. .|Dominy. 

. Harrisoniae X C. Warscewiczii.| Lewis. 


Hyb. nat. (Brésil). 
Sander. 


. intermedia X C. Forbesii .| Sander. 

C. labiata Luddemanniana X C.|Veitch. 
Loddigesii. 

C. Loddigesii X C. labiata vera .| Veitch. 

C. Acklandiae X C. Walkeriana? .| Measures. 

C. Loddigesii X C. Warscewiczii.| Veitch. 

C. labiata Mossiae X C. Schilleriana| Dr. Harris. 

C. Leopoldi X C. quadricolor . .| Mitchell. 

C. fimbriata X C. labiata Mossiae. | Bleu. 

C. Loddigesii X C. guttata leo- | Hybr.nat.(Brésil). 
pardina. 

C. intermedia X C. maxima .| Veitch. 

C. Mossiae X C. iricolor .|Veitch. 
de ce ne ete eee A IC ITOHE 

C. guttata X C. intermedia. .|Dominy. 

C. intermedia X C. superba. . .|Veitch. 

C. calummata X C. Mossiae Wa- |Sander. 
generi. 

C. Aclandiae X C. Forbesii .|Veitch. 

C. guttata X C. Schilleriana?. .|Low. 

C. guttata X C. intermedia? . .| Williams. 

C. Walkeriana X C. guttata? . .|Hybr. naturel. 

C. intermediaX C. labiataMendelii| Veitch. 

C. Harrisoniae X Forbesii. . .|Linden. 

C.BowringianaX C.labiataWars- | Hybr. nat. (Brésil) 
cewiczii. 

C. Mendelii X C. Lawrenceana .|Cookson. 

C. bractescens X C. laevis . .| Veitch. 

C. Limminghei X C. bractescens .| Veitch. 

Cœloglossum viride X Orchis |Hyb. nat. (Autriche 
sambucina. infér.). 

C. eburneum X C. Lowianum. .|B. Jacob. 

C. Lowianum X C. eburneum. .lSeden. 


(1) Syn. Cœloglossum viridi X sambucinum ; Platanthera Erdingeri. 


Cymbidium Winnianum 
Cypripediam (). 


— Calcsolus — macran- 


thum. 


Dendrobium Adrast2 . 


— 


— 


Aeneas . . 
Ainsworthii . 
Alcippe . 


Aspasia (2) 
barbatalo-chlorops. 
Benita. 

EVANS A1 - 
burfordiensse. 
Cassiope . 


cheltenhamense 
chlorostele . 


— var. Owenianum 


chrysodiscus. 


— var. oculatum. 


crassinodi - Wardia - 


num\(3) 


Cÿybele 


Dominyianum . 
Doris. . 
dulce . 
endocharis 
euosmum. 
Earyalus. 
Eurycle:. 

Juno . 


Leechianum. 
Luna . 
melanodiscus 
Mentor 

micans. 5 
murrhiniacum . 
Nestor 

Niobe. 
Owenianun . 


polyphloebium . 
porphyrogastrum 
rhodopterygium 
rhodostoma . 
Roeblingianum . 
Rolfeae . . 
rubens. 


Sanderae. 
Schneiderianum 
Siby1. 


| 


C. giganteum X C. eburneum . 


» » 


C. Calceolus X C. macranthum. 


| D. Pierardi X D. superbum. 


D. japonicum X D. crystallinum . 
.|Mitchell. 


D. aureum X D. nobile. 

D. lituiflorum Freemanni X D. 
Wardianum. 

D. aureum X D. Wardianum 


.| D. barbatulum X D. chlorops. 


D. aureum X D. Falconeri . 
D. luteolum X D. Wardianum. 
D. Linawianum X D. aureum . 


. D. japonicum X D. nobile albiflo- 


Tum, 


| D. aureum X D. luteolum . 


DOUUHEEE 


D. Linawianum X D. Wardia- 
num. 


.|_ D. Linawianum X D. Wardianum 


giganteum. 
D. Findlayanum 
worthii. 


» » 


ME 


fx 


D. Ains- 


Findlayanum X D. nobile . 
nobile X D. Linawianum 
Leechianum X D. japonicum 
aureum X D. Linawianum. 
. japonicum X D. aureum. 
endocharis X D. nobile. 
Ainsworthii X D. nobile 

D. lituifloram X D. Wardianum . 


.| D. Wardianum X D. Linawia - 


num. 
D. nobile X D. aureum . 


. Es Findlayanum X D.Ainsworthii. 


D. Ainsworthii X D. Findlayanum. 
D. primulinum X D. superbum 


D. Wardianum X D. lituiflorum . 
.|Measures. 
.|Wian. 
.|Veitch. 


D. nobile X D. Wardianum 

D. Parishii X D. superbum 

D. tortile X D. nobile 

D. Linawianum majus X D. War- 
dianuin. 

Pierardi? X D. Parishii? 


Pierardi? X D. Parishii? 


. Ruckeri X D. nobile. 

. primulinam X D. nobile . 

. Leechianum X D.nobile nobi- 
lius. 


DUSHEHDDE 


D. nobile albiflorum X D. aureum. 
.| Holmes. 
.|Cookson. 


D. Findlayanum X D. aureum. 
D. bigibbum X D. Linawianum 


(1) Voir au mot Paphiopedium. 
(2) Sya. D. Wardiano-aureum. — (3) Syn. D. Waltoni, D. melanophtalmum, 


crassinode X D. Wardiaoum.. 
.|Veitch. 
.|Veitch. 
.|Cookson. 
.|Veitch. 
.|Veitch. 
.|Veitch. 


. Huttonii X D. sanguinolentum . 


.|Winn. 


» 


.| Barbey. 


.IVeitch. 


Veitch. 


Veitch. 


.|Veitch. 
|Hyÿbr. naturel. 
.|Brymer. 
.|Cookson. 

; Lawrence, 


{Cookson. 


.\ Lawrence. 


| 

| Lawrence. 

|Cookson. 

Lawrence. 
» 


Hybr. nat. 


"| Jeitch. 
Veitch. 
} Lawrence. 


.|ILeech. 
Lawrence. 
Lawrence. 


.|Veitch. 


Veitch. 


Cookson. 


.|Hyb. naturel. 
. Huttonii X D. Dalhousieanum. | Veitch. 
.|Hyo. naturel. 


|Veitch. 

.|Pitcher. 
‘| Sander. 
\Cypher. 


Sander. 


A ie 


Dendrobium splendidissi- | D. aureum X D. nobile. .[Veitch. 
mum. 
— striatum . D. japonicum X D. Dalhousiea- |Veitch. 
num. 
— Vannerianum D. japonicum X D. Falconeri. .|Vanner. 
— Venus. D. Falconeri X D. nobile .| Cookson. 
— Wardiano-japonicum .| D, japonicum X D. Wardianum .|Veitch, 
KA FHOCENÉTONS NE INDE ? X D. Findleyanum .|Lawrence. 
Disa Kewensis . D. grandiflora X D. tripetaloides. |Kew. 
—- Premier . D. tripetaloides X D. Veitchii. .|Kew. 


— Veitchii . = D. racemosa X D. grandiflora. .|Veitch. 
Epicattleya guatemalensis(r). Epidendrum aurantiacum X Catt- |Hyb. nat. (Guaté- 
leya Skinneri. mala). 
Epidendrum dellense. E. xanthinum X E. radicans .|Schrüder. 
— Endresio-Wallisii . E. Endresii X E. Wallisii . .|Seden. 
— O'Brienianum . E. evectum X E. radicans. .|Veitch. 
Epipactis Schmalhausenii E. latifolia X E. rubiginosa .|Hybr. nat. 
Epipactls speciosa. E. rubiginosa X Cephalanthera |Hyb. nat. (Autriche 


alba. inf.). 
E. latifolia X E. microphylla . .|Hyb. nat. (Allema- 
gne). 
Sophronitis grandiflora X Epiden-|Veitch. 

drum radicans. 
G. conopsea X Anacamptis pyra- 


— violacea . 
Epiphronitis Veitchii. 
Gymnadenia-Anacamptis Hyb. nat.(Allema- 

midalis. gne). 
G. conopsea X G. odoratissima, 


G. conopsea X G.. albida 
G. odoratissima X G. albida 


— intermedia(2) 

— Schweïnfurthii . 

— Strampfñi . . 
Gymnigritella Heuñfleri (3) 


.|[Id. (Moravie). 
.|[Id. (Suisse). 
Gymnadenia odoratissima X Nigri-|Id. (Savoie, Tyrol). 
tella nigra. 
— micrantha Nigritella nigra X Gymnadenia |Id. (Tyrol). 
albida. 


— suaveolens(4) Gymnadenia conopsea X Nigri- 


Id. (Alpes Suisse 


tella nigra. Autriche). 
Habenariorchis viridi-ma- | Orchis maculata X Habenaria 
culata viridis. 
Hæmari - anœctochilus De Hæmaria discolor X Anœctochilus |Veitch. 
minyi(5) . Friderici-Augusti. 


en Ve hut) Hæmaria discolor X Macodes |Veitch. 


Petola. 
Laelia D : 


. autumnalis X L. albida . .|Id. (Angleterre). 


— Euterpe . . pumila Dayana X L. crispa .|Veitch. 
— Finckeniana. . autumnalis alba X L. anceps .|Hybr. nat. 
— flammea . .cinnabarina X L. Pilcheriana .| Veitch. 

— juvenilis . . Perrinii X L. pumila . . .|Bleu. 

— Latona .cinnabarina X L. purpurata .|Veitch. 
— lilacina . .crispa X L. purpurata Philbrick. 
— Oweniana 


— Pilcheriana . .|[Veitch. 


L 

L 

L 

L 

L 

L 

L . 
L. pumila Dayana X L. xanthina.|Sander. 
L. crispa X L. Perrinii. 

L 

L. 

C 

C. 

L. 


— porphyritis . . pumila? X L. Dormaniana?. .|Hybr. nat. 

— vitellina . Perrinii X L. harpophylla. .|Schrüder. 
Laeliocattleya albanensis attl. labiata Warneri X L. grandis|Hybr. nat. (Bahia). 

— Amanda . intermedia X L. crispa. .|Hybr. naturel, 

— Amesiana. crispa X C. maxima . .[Veitch. 


(1) Syn. Cattleya guatemalensis et C, g. var. Wischhuseniana. 

(2) Syn. Orchis gracillima, hybride (France). — (3) Syn. Nigritella Heufleri. 
(4) Syn. Orchis suaveolens, Nigritella suaveolens. 

(5) Syn. Anœæctochilus Dominyi, Goodyera Dominyi. 

(6) Syn, Goodyera Veitchii. 


Abo — 


Laelio-cattleya amoena . .| C. Loddigesii X L, Perrinii. . .|Bleu. 
— — var. delicata . TBE entente | Linden: 
— Arnoldiana , , . .| L.purpurata X C. labiata . . .|Sander. 


— Ascania . . . ,. .| C. labiata Trianæ X L. xanthina .|Seden. 
— Aurora . . . . .| L. pumila Dayana X C. Loddi- |Veiich. 
gesii. 
— Baroness Schrôder. .| C.labiata Trianae X L. Jongheana.|Schrôder. 
— Behrensiana. , . .| Laeliocattl. Schilleriana X C. |Sander. 


Loddigesii. 
— bella . + . . , .| L.purpurata X C. labiata vera .|Veitch. 
— Blessensis . , . .| L. pumiia X C. Loddigesii. . .|Lawrence, 
— Brymeriana. . . .| Laeliocattl. Amanda X C. labiata | Brymer. 
Warscewiczii. 
— callistoglossa , . .| L.purpurata X C.labiata Warsce- | Veitch. 


wiczii. 
— caloplosss  : + . .| €. kbiata X L.erispa - - . .|Veitch. 
— Canhamiana. , . .| L. purpurata X C. labiata Mossiae. | Veitch. 
— Cassandra . , . .| C. Loddigesii X Laeliocattl. ele- | Veitch. 
gans. 


— Cassiope. . . . .| L.pumila X Laeliocattl. exonien- | Veitch. 
sis, 

— claptonensis. . . .| Laelio-cattl. elegans X C. Dorma- | Cookson. 
niana. 

AC 0e M NC Rat Dowaia I. praes- |Cookson. 
tans. 

—. Devoniensis. . . .| L. crispa X C. guttata . . . .|Veitch. 


— Digbyano-Mossiae. .| C. Mossiae X L. Digbyana. . .|Veitch. 
— Dominyana . . . .| C. labiata Dowiana X Laelio-cat- | Dominy. 
tleya elegans?. 


VAT TOSEA EE... ? ? ? 

— elegans(1),. , . . .| L. purpurata X C.-1. guttata, var. | Hybr.nat.(Brésil.) 
Leopoldi. 

— — var. blenheimensis.| L.-C. elegans X C, labiata . .|Sander. 

no Piuatufs PR LS et EE, ns .[Low. 

— — — Broomeana, » » 

— — — Cooksoni. » » 

— — — Dayana{3), » » 

— — — gigantea/4), » » 

— — — Houtteana. » » 

— — — jncantans. » » 

en — Decand el M LL NO. lWuliams. 

— — — lobata. » » 

—.  Méncureana l RU  OR 7: aliums. 

— — — Nyleptha. » » 

— — — pachystele(5). » » 

— — — picta. » » 

mr pPlatychila. » » 

 — prasiata (6); » » 

nr — ClESANS VA. 

Tautziana. 

mme 4e CON Le RE. | Ware, 

— Epicasta. . , . .| L. pumila X C. labiata Warsce- | Veitch. 
wiczii, 

— Eumaea . . . .  .| C. labiata Trianae X L. majalis .| Veitch. 

—- eximia . . . . .l C. labiata Warneri X L. purpurata.|Seden. 


(1) Syn. Cattleya elegans. — Laclia elegans. — Bletia elegans. — Laclia Bry- 
stana. — (2) Syn. Blétia eleg. var. Bluntii. — (3) Syn. Bletia cleg. var. Dayana. 

(4) Syn. Laelia gigantea. — (5) Syn. Laelia pachystele. 

(6) Syn. Bletia prasiata. — (7) Syn. Laelia Turneri. 


33 


Eu de 


Laeliocattleya exoniensis, . NE e > X L. purpurata .|Veitch. 

— fausta, . . . . .| C. Loddigesii X Laeliocattl. exo- | Veitch. 
niensis. 

— Felix. + .'. . .| L. erispa X Laeliocattl. Schil- | Veitch. 
leriana. 


— Gottoiana . . . .| C. Warneri? X L. tenebrosa?. .|Hyb. nat. (Bahia). 
— Hippolyta . . . .| L. cinnabarina X C. Mossiae . .|Veitch. 


— Horniana. . . . .| L.purpurata X Laeliocattl. ele- | Horn. 
gans. 

— hybrida Normanii. .| L. pumila marginata X C. labiata | Cookson. 
Dowiana. 

— Ingrami . . . . .| L. pumila Dayana X C. Dowiana |Cookson. 
aurea. 


— Kranzlini . . . .| C. Mossiae Wageneri X Laelio- | Sander. 
catt]. elegans prasiata, 


— leucoglossa . . . .| C.Loddigesii X Laelio-cattl. fausta| Veitch, 

— — ar, bon Al en ne sn et. Dec Luc ie DratalVeltChe 

— Mardelli. . . . .| C. Luddemanniana X Laeliocattl.| Veitch. 
elegans. 

— Marriottiana . . .| L. flava X C. Skinneri. . . .|W. Marriott. 


— Maynardii . . . .| L. pumila Dayana X C. dolosa. .|Sander. 
— Mendelii. . . . .| Laeliocattleya Devoniensis X C.|Veitch. 
labiata var. Luddemanniana. 

— Miss Harry. . . .| C. Mossiae X Laeliocattl. Schil- | Harris. 
leriana. 

— Mylamiana . . . .| C. granulosa X L, crispa . . .|Rollisson. 
— Novelty . . . . .| L.pumila X Laeliocattl. elegans.| Harris. 
— Nysa. . . . . .| L. crispa X C. labiata Warsce- | Sander. 


wWiczil. 
— Pallas, . . . . .| L. crispa X C. labiata Dowiana . ? 
— Philbrickiana . ,. .| C. Aclandiae X Laeliocattl. ele- | Veitch. 
gans. 


— Phoebe . . . . .| C. labiata Mossiae X L. purpurata.| Cookson. 

— Pisandra. . . . .| L.crispa X C. labiata Eldorado .| Veitch. 

— Pittiana . . . . .| C. guttata Prinzii X L. grandis .|Pitt. 

— Proserpine . . . .| L. pumila Dayana X C. velutina .| Veitch. 

— Sanderae. . . . .l L. xanthina X C. Dormaniana. .| Sander. 

— Schilleriana(i) . . .| L. purpurata X C. intermedia | Hyb. nat. (Brésil). 
— — var.alba, RU es nn, Aou 20e ONCE nat (Eee 
— —.var. euspatha@), NO 4 0 0 Hÿbnat (Er 


— — var. irrorata(3). » » » 
— — (var. Scottiana f.) » » » 
— — (Gaskellianaf.) » » » 


— —19CDIIETIANA VAT NV UIliamMS: 
Measuresiana() . 


— — var. Stelzneriana(s) » » 
= var Warner SR DRE NE CE Nil 
— — var. Wolstenhol- » » 

miæ, 
— Sedeni . . . . .| C.superba X Laeliocattl. elegans.| Veitch. 
— Sidneana. . :+ : .| L, crispa X C. granulosa ..-.|Veitch. 
oOtAtIeIANA ? . . .|Veitche 


(1) Syn. Laelia Schilleriana. — Bletia Schilleriana. — Laelia elegans var. 
Schilleriana. — (2) Syn. Laelia euspatha. — Bletia euspatha. 

(3) Syn. Bletia irrorata. — Laelia irrorata. 

(4) Syn. Laelia Measuresiana Will. 

(5) Syn. Laelia Stelzneriana. — Laelia elegans var. Stelzneriana. 

(6) Syn. Laelia Warneri. — L. elsgans, Warneri Will. 


Laeliocattleya Stella . 


— The Hon. Mr Astor 


Limatopreptanthe Aurora 


Timorra. 


Tresederiana 
triophthalma 


Vedasti 


Veitchiana . 
Victoria . 
Zenobia . 


EUR. 75 L- 
Eyermanni . 
Hallii. 
Oweniana 
Sandhurstiana . 


Sedeni 


Veitchii . 


Loroglorchis Lacazeï. 
Lycaste hybrida 


Imschootiana 


Schoenbrunnensis , 


sulphurea 


Masdevallia Amesiana. 


Cassiope . 


PRE : 


Chelsoni . 


— var. splendens : 


Courtauldiana ,. 
Doris. 


Ellisiana. 
falcata 
Fraseri 
Gairiana. 
Geleniana 

— glaphyrantha 


Mdr allia Henrietta 


Hincksiana . 
Kimballiana. 
Mac Vittiae. 
Measuresiana 
Mundyana 


Parlatoreana. 
Pourbaixii 
Rebecca . 


Rushtonii 
Shuttryana . 


splendida 
SE 1 FRE 


V ne Peu : 


= — 

L. crispa X Laelio-cattl. Schille- | Veitch. 
riana Wolstenholmiæ. 

C. labiata Gaskelliana X L. xan- |Astor. 
thina. 

L. pumila Dayana X C. labiata |Veitch. 
Luddemanniana. 

L. crispa X C. Loddigesii . .| Heat. 

C.superbaXLaelio-cattl.exonien- |Veitch. 
SIS, 

C. Loddigesii X L. Pumila mar- |Perrenoud. 
ginata. 

C. labiata vera X L. crispa. .|Veitch. 


L. crispa X C. Dominyana. 


Loroglossum hircinum X ©. Simia. 

L. Deppei X L. Skinneri. 

L. Skinneri X Maxillaria nigres- 
cens. 


.|Ballantine, 


C. Loddigesii X Laelio-cattleya | Veitch. 
elegans Turneri. 

P. vestita Regnieri X L. rosea. .|Winn. 

P. Turneri X L.-P. Veitchii .|Veitch. 

P. vestita X L.-P. Veitchii. 2 de 

P. vestita X L.-P. Veitchii. .| Hall. 

L.-P. Veitchii X P. nivea . .| Williams. 

.| L, rosea X P. vestita rubro-ocu- |Goss, 

lata. 

L.-P. Veitchii X P. vestita rubro- |Veitch. 
oculata. 

P, vestita X L. rosea. . .|Veitch. 


Hyb. nat. (France). 


.|Marshall, 


Van Imschoot. 


L. Skinneri X L. Schilleriana? .|Autriche, 
L. Deppei X L. cruenta? . . .|[W. Bull. 
.| M. Veitchiana X M. tovarensis .|Sander. 
.| M. triangularis X M. Harryana .|Hincks. 
.| M. caudata X M. Estradæ . .|Veitch. 
.| M. amabilis X M. Veïtchiana. .|Veitch. 
SR Ce RIRE UE .|Veitch. 
M. rosea X M. caudata . .|Cookson. 


M. triangul!aris X M. racemosa |Hincks. 


Crossii. 


M. coccinea Harryana X M. ignea.|Veitch. 


M. Lindeni X M. Veitchiana . Drewett, 

M. ignea X M. coccinea. .|Fraser. 

M. Veitchiana X M. Davisii . .|Veitch. 

M. caudata X M. xanthina . .| Sander. 

M. infracta X M. Barlaeana .|Veitch. 

M. ignea erubescens X caudata .|Robinson. 

M. ignea X M. tovarensis .|Hincks. 

M. Veitchiana X M. caudata .|Sander. 

M. tovarensis X M. Veitchiana ./[Stevens, 

M. tovarensis X M.amabilis . .|Sander. 

M. ignea aurantiaca X M, Veit- |Sander. 
chiana. 

M. Veitchiana? X M. Barlaeana ?| Hybr. nat. 

M. Veitchiana X M. caudata .| Pourbaix. 

M. ignea erubescens X M. ama- | Robinson. 
bilis. 

M. ignea Eckhardi X M.racemosa |Hincks. 
Crossii. 

M. caudata X M. Harryana. -.| Lawrence. 


M. Veitchiana? X M. Barlaeana? 
M. Estradae X M. Harryana . 
M. Veitchiana X M. Estradae. 


Hybr. nat. ? 


.|Hincks. 
.lHincks, 


— 472 — 


Miltonia Bleuanalt) . , .| M. vexillaria X M. Roezlii . .|Bleu. 
— — Var: autre Se OR ere 
1 NnoDINOE CS LC CN I CR EE Sanders 


—=,=#"splendens COLOR RS PT Ur Bien 

— Blunti "M :spectabilis > OM-:Clowesir.\Hybtr. nat. 

VAT, EUDDES ANA CT |ÉCCIETSS 

— Joiceyana . . . .| M. Clowesii X M. candida. . .|Hybr. nat.(Brésil). 
Odontoglossum acutissimum | O. luteo-purpureum X ©. Lind- |Hybr. nat. (Nlle 


(2) leyamum. Grenade). 

— Andersonianum. . .| O. crispum X O. gloriosum. . .|Hybr. nat. (Nlle 
Grenade). 

— — var. angustatum. » » » 

— — — aspersum. » » » 

— — — insigne, » » » 

— — — limbatum. » » » 

— — — lineoligerum(3) » » » 

— — — lobatum. » » » 

— — — parciguttatum(4) » » » 

— — — splendens(s). » » » 

— — — tenue(6). » » » 

— — var. violaceumU). » » » 

— Coradinei(8). , . .| O. crispum X O. Lindleyanum.|Hybr. nat.(Colom- 
bie). 

— Denisoniae(9) . . .| ©. crispum X O. luteo-purpureum.|Hybr. nat. (Colom- 
bie). 

— — var. albens. » » » 

— — — elegans. » » » 

— — — Godefroyae. » » » 

— — — Leroyanum{(io). » » » 

— — — lyroglossum'it), » » » 

— — — pallens. » » » 

—— — — Rotschildianum » » » 

(x2), 

— — — Smeeanum(r3) . » » » 

— — — sulphureum. » » » 

— — — varians(r4), » » » 


— excellens. . . . .| ©. Pescatorei X O. triumphans .|Veitch. 
— Impératrice de Russie,| O, Hallii X O. polyanthum . .|Dallemagne. 
—RINOUS RO? X O. ? 


(1) Syn. Miltoniopsis Bleui. — (2) Syn. O. lepidum. 


(3) Syn. O. Fenningsianum. — O. crisbum var. Fenningsianum. — O, lan- 
ceans var. Ÿenningsianum. 
(4) Syn. O. crispum var. limbatum. — O. Fosephinae. — O. lanceans. — 


O. Leeanum. — O. limbatum. — O. odoratum var. Lecanum. 

(5) Syn. O. Schlesingerianum. — O. Scottii. — O. Warocqueanum. 

(6) Syn. O. baphicanthum. — O. odoratum var. baphicanthum. — ©. lanceans 
var. baphicanthum. — ©. Bleichroederiana. — O. Brassia. — O. lanceans var. 
Brassia. — O. deltoglossum. — ©. odoratum var. delloglossum. — O. lanceans var. 
deltoglossum. — O. Edithiae. — O. Fitchianum. — O. hebraicum. — O. odoratum 
var. hebraicum. — O. lanceans var. hebraicum. 

(7) Syn.O. Measuresianum. —O.Ortgiesianum.— O. Pollettianum.— O. Ruckz- 
rianum, — O. crispum var. Ruckerianum. — (8) Syn. O. ligulare 

(o) Syn O. Wäilckeanum.— (10) Syn. O. Leroyanum.—(11) Syn. O. lyroglossum. 

(12) Syn. O. crispum var. Rothschildianum. 

(13) Syn. O. Marriottianum. — O. Smeeanum. 

(14) Syn. O. Bergmannii. — O. Claesianum. — O. macroshilum. — O.prionope- 
talum, — O. Scottis. — ©, Shuttleworthi. 


Odontoglossum Horsmanii (1), 


— Mocoreanum . 
— mulusO) . 


— pulcherrimum 
— Roebelenianum. 
— stauzoides(3). 
— Williamsianum. 


Oncidium Gardneri(4) 


— pectorale(s) . 


— Wheatleyanum . 


Ophrys Albertiana. 


— Aschersonii . 
— Barlae 

— Jeanpersi 

— Luizetii 


— Nouletii . 
— Philippi . 
— pseudo-fusca. 
— pulchra 

— Saratoi 

— Todaroana 


Orchis alata. . 


—= var. alatiflora 
— alatoides. 
— ambigua . 


— angusticruris 
— Arbostii . 
— Barlae 

— Beyrichii. 
— Bonnieriana. 
— Boudieri. . 
— Braunii 


— Canutii . 

— carnea - 
— Champagneuxii. 
— Chatini 

— Debeauxii 

— decipiens. 


— Dietrichiana(6) . 


0, 


O. Pescatoreii X ©. luteo-pur- 


O. polyxanthum X ©. tripudians . 
©. luteo-purpureum X ©. glorio- 


ALT Per 


pureum. 


sum. 
©. crispum X ©. ? 
3 EURE KO: ? 


Q. Pescatorei X O, Lindleyanum . 
O. grande ? X ©. Schlieperianum . 


On. crispum X On. Forbesii 
On. Forbesii XOn. Marshallianum| Hyb. nat. (Rio de 


CDCO000NO0O0CCS 01 000 0 C00S00 CSSS 


. crispum X O. dasytyle . 
. apifera X ©. Arachnites. 
. aranifera X ©. Arachnites . 
. Bertolonii X C. bilineata 
. araniferaX ©. Pseudo-Speculum. 
. apifera var. chlorantha X O. 
.| Hybr. nat.(France) 
.| Hybr. nat.(France) 
.| Hybr. nat.(France) 
. Hybr. nat.(France) 


Pseudo-Speculum. 


. scolopax X ©. aranifera. 
. scolopax X ©. aranifera ? . 
. aranifera X fusca. = 
. arachnites X Psendo-Speculum . | 
. aranifero X Bertolonii 
aranifera X Pseudo-Speculum 


. Morio X O. laxiflora . 
. Morio X ©. ? 


. coriophora X ©. alata . 
. maculata X ©. incarnata 


purpurea X O. Simia 
Morio X O. incarnata 


. palustris X ©. coriophora . 


Simia X ©. Rivini 
palustris X O. militaris. 
Morio X O. latifolia. 
latifolia X O. maculata. 


tridentata X ©. militaris 


. incarnata X ©. elodes ? 


picta ? X O. Morio ? 
Simia X O. ? 


. papilionacea X O. Morio 

. Rivini X O. Simia (O. mili- | 
. .|Hybr. nat.(France) 

.| Hybr.nat.(France, 


tari X O. Simia) . 
ustulata X O. variegata. 


Hybr. nat. 


Hybr. nat. 
Hybride naturel. 
| (Nile Grenade). 
| Vuylsteke. 
|[Hybride naturel. 
Sander. 

Hybride naturel. 
| (Costa-Rica). 


.|Hyb. nat. (Brésil). 


| Janeiro). 


.| Wheatley. 

. Hybr. nat. (France) 
.| Hybr.nat.(France) 
.| Hybr. nat. (France) 


Hybr.nat.(France) 


Hybr. nat.(France) 


.| Hybr. nat.(France) 
. Hybr. nat. (Sardai- 


gne et France) 


.| Hybr. nat.(France, 


| Suisse). 
 Hybr. nat.(France) 


.|Hybr. nat.(France) 
.|Hybr.nat.(France, 


Allem.,Transsylv.) 


.|Hybr. nat. (France) 
.| Hybr. nat.(France) 
.|Hybr. nat.(France) 
.| Hybr.nat.(France) 
.| Hybr. nat.(France) 
.|Hybr. nat.(France) 
.|Hybr.nat.(France, 


| Autriche) 


.|Hybr. nat. (France) 
.| Hybr. nat.(France) 
.|Hybr. nat. (France) 
.| Hybr. nat.(France) 
.| Hybr.nat.(France) 


| Allem., Autriche) 


(1) Syn. O. brachypterum. — O. ferrugineum. — O. lyroglossum. — ©. majesti- 


cum. — ©. Sceptrum album. 


(2) Syn. O. cuspidatum Rchbf. f. — ©. histrionicum Rchb. f. et var. bellum. — 
O. luteopurpureum var. mulus Veitch. — ©. tentaculum Rchb. f. 


(3) Syn. O. elegantius. 


(4) Syn. O. elegantissimum Rchb. f. — O. flabelliferum Pinel. — O. Pollettia- 


num Rchb. f. — ©. praestans Rchb. f. — ©. praetextum E. Morr. 


(5) Syn. O. caloglossum Rchb.f. — O. Larkinianum Gower. —O,.MantiniiGodefr. 
(6) Syn. O. austriaca, — O. ustulato-tridentata. 


Orchis dubia(). , . c 
— — var. spathulata(e) £ 
— — — rotundiloba. 
— Dufftii 
— Franchetii 
— Gennarii, 

— Grenieri . 

— Guestphalica 

— intermedia (3) 

— Jacquini(4) 

— — var. convergens 
— — — parallela 

— — — spathulata() 
— Jeanperti. ; 
— Lange 
— Leguei 


Loreziana(6). . 
Luizetiana 
Matodes!(7) 
monticola 


neglecta . 
olida . 
parvifolia 
Pauliana . 
pentecostalis. 
Perreti 
Rouyana. 
Sauzaiana 
Schulzei . 


speciosissima 
- Timbali(8) 

Timbaliana . 
Uechtritziana 


Vilmsii 

Weddellii. 

— Wilmsii . 

Orchi-aceras Bergoni(9). 
— spuria(ro), 


— Weddellii(rt) 


Orchi-gymnadenia Bruniana. 


000 do0e coopcoocxe CNE MCRO CCE ROCCO OO ON 


Aceras anthropophora X O. Orchis 
Simia. 


AN 


A. 


. militaris X O. Jacquini. 
. Rivini X° O. fusca | 
? 


mn 


? 


. incarnata X O. angustifolia 


? ? 


. Morio X O. papilionacea 


Simia X O. militaris. 


. purpurea X O. latifolia . 
. laxiflora X O. palustris. 


fusca X O. Rivini. 


. superpurpurea X O. Lies 
. fusca X O. Rivini. 


. militaris X O. incarnata. 
. mascula X O. laxiflora . 
. incarnata vel angustifolia X 


O. laxiflora . 


. mascula X O. pallens 


. palustris X O. angustifolia (in- 
carnata). 


incarnata X O. latifolia. 
latifolia X O. sambucina 


maculata X O, palustris. 
? Que 


. coriophora X O. laxiflora 


Morio X O. coriophora . 


. mascula X O. maculata . 


purpurea X O. Morio. 
palustris X O. latifolia . 
coriophora X O. latifolia 


. angustifolia X O. maculata . 


mascula X O. sambucina 
laxiflora X O. coriophora . 


. Morio Y O. maculata. 
. incarnata X O. palustris 


. Morio X O. maculata 
. Simia X O. purpurea. 
. purpurea X O. maculata 


anthropophora X O. militaris. 


anthropophora X O. militaris. 


Orchis maculata X Gymnadenia 


albida. 


.|Hybr. 


.|Hybr.nat.(France) 
.|Hybr.nat.(France) 


Hybr. nat.(France) 

nat. (Thu- 
ringe) 

Hybr. nat. (France) 


.| Hybr. nat. (France) 
.| Hybr.nat.(France) 
.| H.nat.(Wesphalie) 
.|Hybr nat.(France) 


.| Hybr. nat.(France) 
Hybr. nat.(France) 


.|Hybr. nat.(France) 


? (France) 


.|Hybr. nat.(France) 
.| Hybr. nat. ? 


.| Hybr. nat.(France) 
.|Hybr. nat. 


(Thu- 
ringe, Autriche) 
Hybr.nat. (France) 


.|Hybr. nat.(France, 


Suisse, Thuringe) 


.| Hybr. naturel (Au- 


triche) 


.|Hybr. nat, (France) 
.|Hybr. nat. (France) 
.|Hybr. nat.(France) 
.| Hybr.nat. (France) 
.|H. nat. (Autriche) 
.|Hybr. nat. (France) 
.| Hybr. nat.(France) 
.| Hybr. nat. (France) 
.|Hybr. nat.(France, 


Thuringe) 


.| H. nat. (Autriche) 

. Hybr. nat.(France) 
.| Hybr. nat. (France) 
.| Hybr.nat.(France, 


Allem.,Autriche) 


.|Hybr. nat. (France) 
.|Hybr. nat.(France) 
. Hybr. nat. 


(West- 
phalie) 
Hybr. nat. (France) 


Hybr. nat. (France 
Allem., Suisse) 
Hybr. nat.(France) 
Hybr. nat. (Suisse) 


(1) Syn. O. militari-purpurea. — O. Rivino-fusca. — ©. hybrida. 

(2) Syn. O. militari-fusca. — (3) Syn. O. laxiflora var. intermedia. 

(4) Syn. O. militaris var. hybrida. — O. hybrida. — O. fusca var. 6. stenoloba. 
— ©. superburpureo-militaris. — (5) Syn. O. stenoloba. 

(6) Syn. O. Haussknechtii. — O. Kisslingi. — (7) Syn. O. Aschersoniana. 

(8) Syn. O. palustris X O. coriophora var, fragrans. — O. coriophora X O. 
palustris. — (9) Syn. Orchis Bergoni. — Aceras Vayrae. — À. Vayredae. 

(10) Syn. Orchis spuria. — (11) Syn. Aceras Weddellii. 


— Lebrunii. 


— Legrandiana(2). 
Regelii(3). 


Souppensis (4) 


Orchi-platanthera Cheval- 


lieriana (5). 


Orchi-serapias adulterina 


— Barlaæ(6). 
— capitata . 
— complicata (7) 
Debeauxii 


Nouletti (8) 


purpurea(9) . 
Tommasinii (10), 


triloba . 


Paphiopedium Acis 


Adonis 
Adrastus . 
Adriadne. 


Aeson. . 
Ainsworthii . 


albanense 
Albertianum. 


albo-purpureum. 
Alcides 

— Alfred. 
Alfred Bleu . 
Alice . 
Allanianum . 
— almum 

amabile . 


amandum 
Amesianum . 
amethistinum 


amæœnum ,. 


— var. delicatum. 


Orchi-gymnadenia Heinzeliana| O. maculata X G. conopsea 


QG), 


= AS 


Gymnadenia conopsea X Orchis 
latifolia. 

G. conopsea X O. maculata 

G. odoratissima X ©. maculata 


G.conopsea X O. maculata Elodes 

Orchis maculata Elodes X Pla- 
tanthera bifolia. 

Serapiaslongipetala XOrchislaxi- 

flora. 

Orchis papilionacea X Serapias 
Lingua. 

Serapias Lingua X Orchis Morio! 

S. Lingua X O. laxiflora 

Orchis papilionacea X Serapias 
cordigera. 


.|Orchis laxiflora X Serapias cordi- 


gera. 


Serapias longipetala X ©. laxiflora. 
Serapias longipetala X ©. fragrans. 


[Hybr.nat.(Autriche 
| inférieure) 
Hybr.nat.(France) 


Hybr. nat.(France) 
Hybr.nat.(France, 

Suisse, Autriche) 
|Hybr. nat. (France) 
Hybr. nat.(France) 


Hybr. nat.(France) 


Hybr. nat.(France) 
nat.(France) 
nat.(France) 
nat.(France) 


[Hybr. 
Hybr. 
[Hybr. 


Hybr. nat.(France) 
Hybr.nat.(France) 


Hyb. nat. (France, 
Italie, Istrie). 


Serapias neglectaX O. papilionacea| Hybr. nat. (Italie, 


P. Lawrenceanum X P. insigne 
Maulei. 

P. hirsutissimum X P. Curtisii 

P. Leeanum X P. Boxallii. 

P. Spicerianum X P. Selligerum 
majus. 

P. insigne X P. Druryi. 

P. Sedeni X P. longifolium. 

P. Sedeni candidulum X P. longi- 
folium var. Hincksianum. 

P. Schlimii X P. Sedeni. : 

P. Spicerianum X P. insigne Wal- 

lacei. 

. Schlimii X P. Dominyi . 

. hirsutissimum X P. insigne. 

venustum X P. philippinense 


. Stonei X P. Spicerianum . 

. Spicerianum X P. Curtisii . 

. barbatum X P.Lawrenceanum 
. javanico-superbiens X P. Hoo- 
kerae. 

P. insigne X P. venustum . 


+ #9 #0 F0 0 0 0 NT 


. ciliolare X P. insigne Chantini. 
.|Drewett. 


Istrie),. 
Pitcher. 


Ingram. 
Veitch. 
Statter. 


|Veitch. 
Mitchell. 
Hincks. 


.|Cookson., 


J. Hye. 


.|Veitch. 
.| Sander. 
.|Drewett. 


Bleu. 


? 
Cookson, 
Bleu. 


Bowring. 


P. villosum aureum X P. venustum| Williams. 


P. barbato - Veitchianum X P. 
Hookerae, 
P. barbatum X ? 


Bleu. 


? 


) Syn. Orchis Heinzeliana. — (2) Syn. Gymnadenia Legrandiana. 


) Syn. Orchis Chevallieriana. — (6) Syn. Serapias Barbae. 


(: 
(3) Syn. Orchis Regelii. — (4) Syn. Gymnadenia Souppensis. 
(5 
( 


7) Syn. Serapias Timbali. 

(8) Syn. Serapias Nouleti. — S. Lloydti. — S. triloba. 
(a) Syn. Serapias purpurea. — S. Roussii. — S, Fontanae, — S. triloba. 
(10) Syn. Serapias tommasinis. 


AE 


Paphiopedium Annie Measures| P. bellatulum YX P. Dayanum , .|Sander. 
— Antigone. . | P. Lawrenceanum X< P. niveum .|Veitch. 
— Anton Joly P. vernixium X P. Spicerianum .|Ant. Joly. 
— Aphrodite >: P. niveum *X Lawrenceanum .|Veitch. 
— apiculatum P. Boxallii X P. barbatum. .|Drewett. 
— Apollo. P. vexillarium X P. Stonei. . .|Measures. 
— AE P. concolor X P. Spicerianum. .|Veitch. 
— Arnoldianum P. superbiens X P. concolor . .|J]. Manda. 
— Arthurianum E P. insigne X P. Fairieanum . .|Veitch, 

var. pulchellum. Id. var. Chantini X id. . .|Veitch. 
— Ashburtoniae P. barbatum YX P. insigne. . .|Cross. 
— Ashworthiae . P. Leeanum superbum YX P. selli- |Ashworth. 
gerum majus. 
— — Var. Laucheanum .| P. barbatum var. Warneri X P. |Maynard, 
insigne var, anœnum, 

— Ashworthii . P. plunerum X P.Spicerianum .|Sander. 

— Astraea P.philippinenseX P. Spicerianum |Veitch. 

— Atys P. Hookerae? X P. venustum? .|Harris. 

— aurosum . P. Lawrenceanum X P. venustum|Cookson. 

— Aylingii . P. niveum X P. ciliolare .|[Ayling. 

— Baconis P. chlorops X P. Schlimii . .| Sander. 

— Ballantine o & P. purpurataum X P. Fairieanum.|Veitch. 

— barbato-superbiens P. barbatum X P. superbiens . .|Sander. 

— barbato-Veitchianum .| P. barbatum nigrum X P. super- | Bleu. 
biens. 

— Bartetii P.barbatum X P. insigne Chantini|Bauer. 

— Beatrice. ; P. Boxallii X P. Lowii . .|Drewett. 

— Behrensianum . P. Boxalli X P. lo grande . .| Sander. 

— bellinum. P. vernixium X P. Harrisianum ./Sander. 

— Bellona . P. villosum X P. Spicerianum. .|Measures. 

— Berenice. P. Roebelini X P. Lowii .|Vipan. 

— Berggrenianum. P. Dauthieri X P. insigne. .| Sander. 

— Bijou . P.oenanthum X P.Lawrenceanum Ingram. 

— Bonnyanum. . P. villosum X P. ? | 

— Bosscherianum . P. Spicerianum X P. barbatum |Vuylsteke. 
superbum. 

— Boyleanum . P. Crossianum X P. Harrisianum. ? 

— Bradshawianum P. Lawrenceinum X P. Spice- |Lewis. 
rianum. 

— Bragaianum . P. hirsutissimum cœrulescens X |Linden. 
P. Boxallii atratum. 

— Brayanum . . P. villosum X P. barbatum. 

-- Browni : P.leucorrhodum X P.magniflorum |Cookson. 

— Bryani P. philippinense X P. Argus 

— Brysa. P. Sedeni candidulum X P. Bois- |Veitch. 
sierianum. 

— Buchanianum P. Druryi X P. Spicerianum . .|Buchan. 

— Burberryanum . P. Boxalli X P. plunerum. .| Sander. 

— Burbidgeanum . P. Dayanum X P. concolor .|Measures. 

— burfordiense, P. Argus X P. philippinense . .|Lawrence. 

— Burtoni : P. Lowii X P. Hookerae. ? 

— Burtonii. . P. Lowii? X P. Hookerae? . .|F. M. Burton. 
— Cahuzac . P. Spicerianum X P. Haynal- |Sander. 
dianum. 

— calanthum . P. barbatum Crossii X P. Lowii .| Veitch. 
— cCaligare . . P. venustum X P. Dayanam .| Drewett. 
— calophyllum . P. barbatum X P. venustum . .|Williams. 
— Calloso-Argus . P. Argus X P. callosum. . . .|Graves. 
— calurum . P. longifolium X P. Sedenii .|Veitch. 
Calypso P. Spicerianum X P. Boxallii. .|Cookson. 
Var. Cypher. P. Spicerianum magnificum X P.|Cypher. 


Boxallii atratum. 


Paphiopediam Canbridgea- 

aum. 

— Canhami. . 

—— Captain Lendy. 

— çcardinale. 

— — var. Vanneri 

— Carnusianum 

— Carrierei. . . 

— Cassiope . 

— Castleanum . 

— Cecilia 

— Celeus 

— Celia . 

MERS an Ce 

— Chantino-ciliolare. 


Charles Canham 
Charles Gondoin 
Charles Rickman . 
Chelsesense . . . 
Chlonius. 


chloroneurum 
chlorops . . 
chrysocomes. 
claptonense . 
Claudi. : 
Clément Loury. 


Cleola 

Cleopatra. 
Clinkaberryanum . 
Clotilde Moens . 


Clovenfordsii 
Clymene. 


Cobbianum . 
Colemani. 
compactum . 


conchiferum. 


concinnum 
concolawre . 
conspicuum . . . 
Constableanum. 
Constance : 
Cooksonianum . 
Coppinianum 
corbeillense . 
Corningianum . 
Cowleyanum. 
Creon. 


Crethus . 
Crossianum . . 
— var. Castle Hille 


Cybele . . 


. . ' . « dede RICO , ‘ Cain à te . CNT NC , . . RIZ . . CE TE | 
—————_—_—_—_—_—_ _— —— — 0 , , . . Levy 
_——— SR 
_ 


SLR 


P. Harrisianum X P. insigne vio- ? 
laceum. 


P. villosaum X P. superbiens . .|Veitch. 


| P. Boxalli X P. Charles Canham. | Ingram. 


P. Sedeni X P: Schlimii albiflorum.| Veitch. 
P. Sedeni candidulum X P.Schlimi 

P. Haynaldianum * P. Spicerianum| Linden. 
P. Veitchii X P. veaustum. .| Bauer. 
P. venustum *X P. Hookerae 
P. hirsutissimum X P. superbiens. | Sander. 
P. tonsum X* P. Spicerianum . .|Sander. 
P. insigne Chantini X P. villosum. | Measures. 
P. Spicerianum X P. tonsum . .|Kimball. 
P.Spicerianum Y P.hirsutissimum. | Drewett. 


P. Chantini X P. ciliolare . .| Bleu. 

P. villosum X P. superbiens .|Canham. 
P. Chantini X P. vernixium. 

P. barbatum X P. bellatulum. .|Rickman. 
P. Lowii X P. barbatum .| Bull. 


P. conchiferum X P. caudatum |Veitch. 


Lindeni. 


P. Crossianum X P. venustum. .| Warner. 

P. Hartwegi X P. caricinum .| Horn. 

P. caudatum X P. conchiferum. | ? 

P. Harrisianum X P. villosum. .|Low. 

P. Spicerianum X P. vernixium. 

P. Harrisianum X P. insigne |Jolibois. 
Chantini. 

P. Boissierianum X P.Schlimii |Veitch. 
albiflorum. 

P. Hookerae X P. œnanthum su- | Winn. 
perbum. 


P. philippinense Roebelini X P. |Pitcher. 
Curtisii. 


P. Leeanum superbum X P.Hay- |Linden. 
naldianum. 

P. superbiens X P. philippinense. 

P. caricinum X P. caudatum |Veitch. 
Wallisii. 

P. Lawrenceanum X P. Sallieri .|W. Cobb. 

P. javanicum X P. Harrisianum .| ? 

P. Sedenii candidulum X P. ca- |Ingram. 
lurum. 

P. caricinum X P. longifolium|Bowring. 
Hartwegii. 

P. Harrisianum X P. purpuratum.| Bowring. 


P. concolor X P. Lawrenceanum. | Lawrence. 


P. villosum X P. Harrisianum ? ? 

P. Fairieanum X P. Dayanum. ./Pitcher. 

P. Stonei X P. Curtisii . .|Drewett. 

P. barbatum X P. Argus ?. | ? 

P. Sedenii X P. conchiferum . .|Sander. 

P. Bullenianum X P. insigne . .|Darblay. 

P. superbiens X P. philippinense .| Veitch. 

P. Curtisii X P. niveum SC TaUtEr 

P. œnanthum superbum X P. Har- Veitch. 
risianum superbum. 

P. Spicerianum X P. Argus .| Veitch. 

P. insigne X P.venustum pardinum Cross. 

P. Crossianum X P. insigne Chau- |G. C. Rafael. 
tini. 


P. Draryi X P. Lawrenceanum . ? 


.|Seeger et Tropp. 


Paphiopedium Cydippe . 


Cymatodes . 
Cythera . . 
Daisyae . . 


Dauthieri. 
Daviesianum. 


de Cockianum 
decorum . 


delicatulum . 
Denisianum . 


Desboisianum 


De Witt Smith . 


Diana. 


Dibdin ,. 
dilectum . 
discolor . 
doliaren- 7 
Dominyanum 
Doris . 


Drewettianum . 


Echo . 
Edith Winn, 
Edithae . 


Edwardi. 
Eismannianum 
Electra 
elegans 

Elinor . 


Elsteadianum 
enfieldense . 
Engelhardtae 
Ensign . 


Ephialtes. 
Erato. 


Erycina . 
Eucharis, . 


Euryades 
Euryaie . 
Euryandrum. 
Eurylochus . 
Evenor 

dia ot d 
Eyermannianum 


. 


. 


Fairieano-Lawrencea- 


AU 
fascinator. . 


Fausianum . 
Felix Jolibois 


Figaro 


P. superbiens X P. Hookerae . 

P. Curtisii X P. superbiens. . . 

P. Spicerianum X P. purpuratum. 

P. Lowii X P. œnanthum super- 
bum. 

P. barbatum X P. villosum. 


P. Boxallii atratum X P. Argus 
Moensii. 
BP; ? D OPTR 


P, Sallieri Hyeanum X P. Law- 
renceanum,. 

P. Dayanum X P.barbatum Crossii 

P. Boxallii atratum X P. Spice- 
rianum. 

P. venustum X P. Boxallii atratum 

P. Spicerianum X P. Lowii . . 

P.barbatum superbum X P. Spice- 
rianum. 

PoAreus IP: /Boxallt. 0: 

P. Boxallii X P. hirsutissimum 


biflorum. 


.| P. superbiens X P. Fairieanum . 

. Seeger. 

.|Veitch. 
? 


P. Boxallii X P. Harrisianum. 
P, insigne X P. Harrisianum . 
P. villosum X P. barbatum 


? 
? 


R. H, Measures. 


Graves. 


.|[Van Houtte, 


Statter. 


Pitcher. 
Hye-Leysen. 


Drewett. 
? 


Vervaet. 
Low. 


Measures. 


J. C. Cowley. 


.|E. Vervaet. 


P. venustum X P. barbatum var. .| Warner. 
P. venustum X P. villosum? .|Cookson, 
P. caricinum X P. caudatum . .|Veitch. 
P. venustum X P, Stonei . . .| Cookson. 
1 ? ? ? 
P. Hookerae X P. insigne , . . Graves. 
P. Stonei X P. purpuratum. . .|Winn, 

| P. conchiferum X P. Schlimii al- |Sander. 


Graves. 


Drewett. 


P. selligerum majus X P. super- 
biens. 
P. conchiferum X P. grande . ./ Ingram. 


P. Lawrenceanum X P. Hookerae. 

P. insigneMaulei X P.Spicerianum 

P. Harrisianum X P. barbatum 
Crossii. 

P. insigne Chantini X P. auro- 
reum,. 

P. Sallieri X P. hirsutissimum . 

P. Spicerianum X P. Harrisianum 

P. insigne Chantini X P.Lawren- 
ceanum. 

Plecanum @P. Boxallie 


P. Lawrenceanum X P. superbiens. 
| P. barbatum X P. Stonei. 
| P. ciliolare X P. hirsutissimum 


P. Argus X P. bellatulum . . . 
P. villosum X P. hirsutissimum. 
P. barbatum X P. Spicerianum . 


P.LawrenceanumXP. Fairieanum. 

P. Spicerianum magnificum X P. 
hirsutissimum. 

P. Dauthieri X P. calophyllum . 


.| P. HarrisianumX P. insigne Chan- 


tini. 
P. Spiceriannm X P. œnanthum 
superbum. 


Hollington, 
Linden. 
Winn. 


Vuylsteke. 


|Vuylsteke. 


Veitch. 
Veitch. 
Veitch. 


.|Veitch. 
|(Veitch. 
Hybr. nat.? (Siam). 


Sander. 


Measures. 
Jules Hye. 


Sander. 


Jolibois. 


Seeger. 


Paphiopedium Finetianum . 


— Fitchianum . 

— Fraises . --.- 
— Frederico-nobile . . 
— Galatea . 

— Galatea majus 

— Gallicei . 

— gandavense . 

— Ganes: 


— Gaskellianum 

— gemmiferum. 

— Georg Kittel. 

— Germinyanum 

— — var. violaceum . 
— giganteum 


— gigas . 


— Godseffianum 

— Goultenianum . . 
— Gowerianum 

— grande 


— Gravesiae 
— Greyanum 
— G. S. Ball 


— ]. Gurney Fowler . 
— Hanischianum . 
— Hardyanum. 

— Harri-Leeanum, 


— Harrisianum. 
— — V.IOSeumM . . 
— Harrisi-froyae . 
— Harryanum . 
— Haywoodianum 
— H. Ballantine . 
— Hebe. 

— Hecla. 

— Hephaestus . 
— Hera . 

— Hermione 


— Horneri . 

— Hornianum . . 
— Huybrechtsianum . 
— hybride . 

— hybride . 

— — nov . 

— hybridum I 
—-hybridum . . . . 
— Ianthe 

— Imperatrix . 


— imperiale 
— Indra. 
— Inspirator 


— intermedium. 


“Rat ? à: 


P. philippinense X P. barbatum | 

nigrum. ? 
venustum X P. Hookerae . .|/ Williams. 
hirsutissimum X P. barbatum .|Fraser. 
Boxalli YX P. Morganiae. . .|Seegers. 
insigne X P. vernixium. . .|Veitch. 
insigne X P. Harrisianum . .! ? 
insigne X P. villosum . . .| ? 
barbatum X P. Swanianum. .| ? 
Sallieri X P. Lawrenceanum |Measures. 
Hyeanum. 
Spicerianum X P. vexillarium .|Gaskell. 
Hookerae X P. purpuratum. .|Bowring. 
Daÿyanum superb. X P. superb.|Kittel. 
villosum X P. hirsutissimum .|Veitch. 
. villosum X P. hirsutissimum .|Vuylsteke. 
. Sallieri Hyeanum X P. Harri- |Hye-Lysen. 
sianum. 
P. Lawrenceanum X P. Harrisia- As 


HUM MU UT 0 0 PU 


num nigrum. 
P. Boxalli X P. hirsutissimum. .{Cookson. 


P. Curtisii X P. callosum . . .|Goulten. 
P. Lawrenceanum X P. Curtisii . ? 
P. longifolium Hartwegii XP.cau- | Veitch. 
datum. 
P. Argus X P. niveum . . . .|Graves. 
P. ciliolare X P. Druryi . . .|Pitcher. 
P. Spicerianum X P. Lawrencea- |Sander. 
_. | 
P. Godefroyae X P. barbatum .|Low. 
P. albanense X P. reticulatum. . 
P. caudatum X P. Ainsworthii. .|Hardy. 
P. Harrisianum superbum X P. |Clark. 
Leeanum superbum. 
P. villosum X P. barbatum. . .|Veitch. 
P. barbatum Warneri X P.villosaum|/T. Twicekenham. 


LE ? > PT: Lawrence. 
P. niveum X P. Lawrenceanum . 

P. Druryi X P. superbiens. . .|Veitch. 

P. purpuratum X P. Fairieanum .| Veitch. 

P. Spicerianum X P. Stonei . .|Graves. 
P. superciliare X P. Swanianum .|Ingram. 
P. barbatum X P. Lawrenceanum|!Measures. 
P. Spicerianum X P. villosum. .|Measures. 
P. Spicerianum X P. barbatum |Young. 


Warneri. 
P. Boxallii X P. Argus . . . .|Col. Marwood. 
P. superbiens X P. Spicerianum . Horn, 
P. hirsutissimum * P. Spicerianum| Vervaet. 
P. Sallierianum X P. hirsutissinam | Vaylsteke, 
P. Harrisianum X P. Hookerae -| Vaylsteke, 
P. Lawrenceanum YX P. concolor .|Peeters. 
P. barbatum X P. villosum . .|Bull. 
P. HaynaldianumX P.Spicerianum|Parr. 
P. Harrisianum YX P. venustum ./|Veitch. 
FE 


. Ashburtoniae expansum X P. 


calophyllum. 
Le ? A ? .|Kimball. 
P. callosum X P. villosum . . .|Measures. 


P. Spicerianum superbum X P. |]. Hye. 
tonsum. 
ee ? DE ? et lENCREr. 


Paphiopedium Io . 
— Ilo-Spicerianum. 

Ionides 

ECS 


javanico-superbiens 
Johnsonianum . 


Joseph Donat . 


Josephinianum . 


— Juno . 


Kalæ . 
Kerchovianum . 
Kirchoffianum 
Kramerianum 
Laforcadeiï 

La France 

La Nymphe. 
Lathamianum 
— Laucheanum 
Laurae 
Lawrebel 
Lawreconco . 
Leda . 

Ledouxi . 
Leeanum. 

— var. pulchellum 


— var. superbum . 
— var. Youngs 
Leechi 
Lemonierjianum 
Leonae 
leopardinum 
lepidum . 
leucochilum. 


leucorrhodum 


lineolare . 
Lobengula 
Loewegrenianum 
Louryanum . 
Louryi 

lucidum . 
Lucie. 
Lucienianum 
luridum . . 
luteo-pictum. 
lutescens. 
Lynchianum 
Macfarlaneanum 
Macfarlanei. 
macrochilum 
macropterum 
Mne Barby . 


Joséphine Jolibois . 


NUDIÉ TEEN 


javanico-Spicerianum . 


. 


0 Hd 0 40 Ho 9 9 MU 0 TU 0 


P. Argus X P. Lawrenceanum. .|Cookson, 

P. 10 grande X P. Spicerianum .|Vanner. 

PORC PE Bol ne 

P. javanico-superbiens X P. Ce Bleu. 
lare. 

P. javanicum YX P. Spicerianum .|Page. 

P. javanicum X P. superbiens. .|Veitch. 

P. nitens maguificum X P. Law- | Sander. 
renceanum. 

P. AshburtonjaeX P. Spicerianum. | Sander. 

P.Harrisianum X P. insigne Chan-|Jolibois. 
tini. 

P. Druryi X P, javanico-super- ? 
biens. 

P. callosum X P. Fairieanum. .|Drewett. 

P. Boxallii atratum X P. hirsutis- | Vuylsteke. 


simum, 


. Argus X P.barbatum superbum|Measures. 

. Curtisii X P. barbatum nigrum. | Lubbers, 

. Dauthieri X P. Spicerianum ? 

. œnanthum X P. villosum . .|Sander. 

. insigne Chantini X P.barbatum.|Bauer. 
nitens X P, niveum . .|Seegers. 
œnanthum X P. Dauthieri . .| Ingram. 
Spicerianum X P. villosum .|Latham. 

. barbatum X P. insigne. .| Sander. 

. villosum YX P. superciliare . .|Le Doux. 

. Lawrenceanum X P.bellatulum.| Lawrence. 

. albanense X P. Boissierianum.|Sander. 

P. Harrisianum X P. venustum .|Bowring. 
P, callosum X P.insigne Chantini.|Le Doux. 


P. insigne X P. Spicerianum 
P. insigne Nilsoni X P. Spice- 
rianum. 


P.insigne Maulei X P.Spicerianum 
12 ? K EP: ? 
152 ? *XE ? 


P. calurum X P. porphyreum. 
P. insigne Chantini X P. callosum 
P. Harrisianum X P. i. Maulei 
P. niveum *X< P. barbatum . 

P. Godefroyæ X P. bellatulum 


P longifolium Hartwegii X Schli- 
mii albiflorum. 

127 ? QE: ? 

P. Harrisianum X P. Boxallii . 
P. Spicerianum X P. lo grande 

. villosum X P. vernixium 

.i. Chantini X P. Harrisianum. 
. villosum X PE, Lowii. : 
. Lawrenceanum YX P. ciliolare. 
. villosum X P. bellatulum 


. Harrisianum X P. auroreum 
? SE ? 
P. Spicerianum X P. javanicum 
Idem X P. selligerum majus. 
P. Lowii X P. Lawrenceanum. , 
P. calophyllum X P. Spicerianum. 
P.longifolium XP. caud. Lindeni. 
P. Lowii X P. superbiens … . 
P. Lawrenceanum X P. tonsum . 


+ #9 #0 #9 #9 + 


.| Lawrence. 


Veitch. 
L. Young. 
? 


Leon. 
? 


: 
F 


.|Hybr. nat. 
(Cochinchine), 


Veitch. 


Cookson. 


.|Ingram. 


? 


À 


? 


.|Seden. 


Moreau. 


.| Linden. 


- 
H 


? 


.|Pitcher. 


Sander. 
Lewis. 

Sander. 
Veitch. 


.|Veitch. 
? 


til 


porn Mme Canham 


—_— — Cappe . . . 
nn) CHE en 6 Lee 


— Enilie Gayot 


— Gibez . . 
— Gondoin. . 


— Harry Veitch . 
— Jules Hye 

— Octave Opoix 
— C. D.Owen. 

— Tautz. : 
— Van Houtte. . 
— Warren >. : |: 


M:lle Josée Descombes. 
— Nancy Descombes. | 


Maesereelianum . 
magniflorum. . 
Malyanam _- 
marmorophyllum . 
Marshallianum. 


Marshianum.,. . . 


Mary Lee . 
Masonianum. . . 


Massaianum. . . 


Mauricianum 
Mawoodii 
Maynardi. . . 
Measuresiae. . . 
Measuresianum . 
Medea , 
Meirax . e 
melanophthalmum 
melanthus . . 
Merops . 
microchilum. 
Minerva ,. 


miniatum.:. 
Minos. 
Moreananum, 
Morganiae 


— Var. PSE 2 


— C. D. Owen. 
Mulus . 


Muriel Rp = 
Maurillo 

Niobe. 

nitens . 
nitidissimam 
nobile : 
Northumbrian . 
Numa. . .- 
obscurum . . . 
œnanthum , 


| P. Boxalli atratum X P. Argus 


.| P. Warscewiczii X 


P. superbiens X P. villosam .|Veitch. 
P. Spicerianum X P. Dauthieri .|Cappe. 


P. Boxalli X P. insigne Chantini. 
P.HarrisianumX P. insigne Chan- | Jolibois. 
tini. 

P. venustum X P. villosum. | ? 

P. insigne Chantini X P. Harri- |Jolibois. 
sianum. | 

P. niveum X P. Lawenceanum. ? 

P. Spicerianumsuperb. XP: tonsum FRERES 

P. superciliare X P. niveum . .|l 

P. superciliare X P. villosum . .| 

1e ? > AE ? : Fe 

P. niveum X P. barbatum . . .| 

P. Dauthieri X P. œnanthum EM 


superbum. 
P. œnanthum X P. Argus . . . ? 
1e niveum DOPTAEEL ES. ? 
P.i. Chantini X P. Spicerianum i ? 
REMOTE ? Pitcher, 
| P. Spicerianum X P. Crossianum. | Sander. 
P. Hookerae X P. barbatum .| Veitch. 
P. venustum pardinum X P. con- |Veitch. 
color. 
P. Harrisianum X P. œnanthum ? 
superbum. 
P. Leeanum X P. arthurianum .|Lee. 
P. villosum X P. Harrisianum ? 
superbum. 


P,superciliare X P.Rothschildia- |Sander. 
es | 

P. Harrisianum X P. Spicerianum Mre Block. 

P. niveum X P. Harrisianum . .| ? 

P. purpuratum X P. Spicerianum. | Sander. 

P. bellatum X P. superbiens. 


P. villosum X P. venustum ? . .|Hybr. nat. 
P. Spicerianum X P. hirsutissimum|| ? 

P. venustum X P. ? Warner. 
P. barbatum X P. venustum . .| Warner. 
P. Hookerae X P. Stonei . Seden. 

P. ciliolure X P. Druryi .|Veitch. 

P. niveum X P. Druryi. .|Veitch. 

P. venustum X P. Harrisianaom |[Measures. 


elegans. 
P. Spicerianum X P. Fairieanum, Peeters, 
P. SpicerianumX P. Arthurianum. Veitch. 
P. superciliare X P. callosum. .| ? 


P. superbiens X P. Stonei . . Cookson. 
P. superbiens X P. Stonei. . . Lawrence. 
P. superciliare X P. villosum. .' Sander. 
P. hirsutissimum X P.Lawren- |Sanders. 


ceanum. 
P. niveum X P. insigne? . . Hollington. 
. Vuyisteke, 
P. Spicerianum X P. Fairieanum . Cookson. 
P. villosum X P. insigne Maulei . Veitch. 
<P.conchiferum, Cookson. 
ee ? DE. RE . Kimball. 


P.calophyllumXP.insigne MRouier, Drewett. 


P, Lawrenceanum X P. Stonei . Veitch. 
P. villosum X P. venustum. . Veitch. 
P. Harrisianum X P. insigne . .!Veitch, 


= 


Paphiopedium œnanthum | P.Harrisianum X P.insigne Maulei|Veitch. 
SUDELDUT CN 

œno-superbiens. P. HarrisianumX P. insigne Maulei Lawrence. 
Œnome . P. Hookerae X P. superbiens . .|Sander. 
OPUM TS. P£ ? Dee ? . .|Measures, 
OFESIES P. HarrisianumY P. insigne Maulei |Veitch. 
Orion. P. insigne X P. concolor . . .|Veitch. 
ornatum . .| P. Harrisianum X P. villosum. .|J. Hye. 
orphanum P, Druryi X P. barbatum?. . .|Veitch. 


Orphan of Rochester ON A Re ? . . :.|Kimball. 
Orpheus . . .| P. venustum X P. callosum . .|Sander, 
Osbornei. P. Harrisianum superbum X P. 

| Spicerianum . . .|Blome. 
Othello . . P. hirsutissimum X P. Poele .|Veitch. 
Pageanum . ,. P. superbiens X P. Hookerae . ,.|Page. 
Pallas. . P. calophyllum X P. callosum .|Drewett. 
Ballum P. calophyllum X P. callosum .|Drewett. 
Pandora . - P. Argus X P. Dayanum .|Joly. 
Paris . P. bellatulum X P. Stonei . .|Measures. 


Parksianum . 


P. Spicerianum X P. marmoro- 


phyllum. . . . …. |Pollett. 
patens. P. Hookerae X P. barbatum  |VeEitch, 
Paul 00 12 selligerum majus X P. Harri- 

sianum . .|Bowring. 
pavoninum . P. Boxallii X P. Senatn . .|Drewett. 
Peetersianum P. philippinense X P. barbatum .|Peeters. 
Palasn .| P. Haynaldianum X P. insigne .|Graves. 
Penelaus. P.calurum X P. caudatum Lindeni. | Veitch. 
Perseus P. Sedeni porphyreum X P. Lind- 

leyanum . .|[Veitch. 


Phaedra. . P. Sedeni Éandiduleins (e: Lind- 

leyanum nee 6 0 .|Veitch. 
Pheres . . .| P. insigne X P. St .|Veitch. 
picturatum P, Spicerianum X P. superbiens .|Measures. 
Pitcherianum : P. Harrisianum superbum X P. 

Spicerianum. - .|Cookson. 
— var, Williamsi. .| P. Harrisianum superbum X ie 

Spicerianum superbum . . . A 
pleistochlorum . . P.barbatum X P. javanicum virens|Drewett. 
pleuroneurum Èé ? XP. ? ? 
plunerum. P. venustum X P. villosum. . .|Cookson, 
PINOT P. Boxallii X P. calophyllum. .|Low. 
politum . . . P. superbiens X P. venustum . .|Warner. 
Pollettianum + | P. calophyllum X P. œnanthum 

superbum . . . 2 .| Sander. 
polystigmaticum .| P. venustum X P. Spicerianum .|Measures. 


porphyreum . 


P. longifolium Hartwegii X P. 


Schlimii . : .|[Veitch. 
porphyrochlamys . 12 Nr num QE. est 

mum . 0. Veltche 
porphyrospilum. P. venustum X P. air . —… -|Veitche 


Poyntzianum . 


P. callosum X P. Hookerae 


. Hybr. nat. (Siam). 
? 


PHIADUS EEE P. philippinense X P. villosum . E 
Pryorianum. P. LathamianumX P. Harrisianum Sander. 
Psyche . PE ? PE: ? Winn. 
pulchellum . P. grande X P. Sedeni candidulum |Vanner. 
pulcherrimum P. Harrisonianum X P. insigne ? 
pycnopterum P. venustum X P. Lowii . .|[Veitch. 
radiosum . P,Lawrenceanum*P.Spicerianum |Veitch. 
regale. . P,insigne Maulei XP. purpuratum. ® 
Rex . P. Spicerianum magnificum X 


PIONEER 


Jules Hye. 


Paphiopedium Reynaldi. 
— Reynaldianum . 


Ridolfanum. 


Robinianum. 
robustius. : 
Rodigasianum . 
Rowallianum 
Sallieri : 
Sanderosaperbiens 
Sapho. . . . 
Saundersianum . 
Savageanum . 
Schlesingerianam . 
Schræderae . 

Seda . 

Sedenii . . 

— var, Be PASS 


—_ — porphyreum 


— — Weïidlichianum 


Seegerianum 


selligerum 

var. majus 
SOHERR E = - 
Sénateur Montefiore 


Sibyrolense . 
Siebertianum 
Siemoni . 


Simoni 
Siraniacum . 
Smithii - 
Southgatense 
Sphinx 


P. villosam XX P. Boxallii . 
P. insigne X P. callosam 
P. Wallaertianum X P. 
Chantini. = SA te 
P. Parishii X P. Lowii. . -. .|Linden. 
P. Sedeni X P. longifoliüm. .| Sander. 
P. purpuratum X P. Spicerianum.|  ? 
P. villosaum aureum X P. venustum. Pitcher. 
P. villosum X insigne . . . 
P. Sanderianum X 5e superbiens . ERRE 
P. Lowii X P. barbatum . 
P. caudatum X P. Schlimii. ja 
P. Harrisianum X P. Spicerianum. |Seeger. 
P. Boxallii *X P. insigne . : |Seeger. 
P. caudatum X P. Sedeni . .|Veitch. 
P. Harrisianum X P. venustum .|Bowring. 


1 


insigne. 


2 


P. Schlimii X P. longifolium . .|Veitch. 
P. Schlimii var. albiflorum X P. 

longifolium . .|Veitch. 
P. longifolium Hartwegii ira E: 

Schlimii . . LA IVeich. 

P. Schlimii X P. iongitoliun : .|Cookson. 

.| P. Spicerianum X P. Harrisia- |Seeger. 
— | 

P. barbatum X P. philippinense .| Veitch. 

Veitch. 


Spicero-hirsutissimum. 


Statterianum 


HE UNS ER =: 
stenophyllum s 
suffusum . . 
superciliare . 

— var. Ornatum 


Suramanum . 
Swanianum . 
Swinburnei . 
Sylvia 

Tacita . 
Tautzianum . : 
— var. lepidum . 
T. B. Haywood. 
Telemachus. 
tenebrosum . 


Tennyson . 


tessellatum , 


< barbatum X P. philippinense . 
P. javanicum X P. superbiens. .| 

P. marmorophyllum X P. Spice- Peeters. 
rianum. 

P. Boxallii X P. insigne . . .| ? 


? 


P. Dayanum X P. insigne . . .| ? 

P.superbiens X P. Lawrencea- | Pucci. 
num. 

P. Leeanum X P. insigneChantini, | Terrier. 

P. Dayanum X P. barbatum . .| ? 

P. Lawrenceanum X P. ciliolare.| Low. 

= bellatulum X P. Harrisianum. |Statter. 
P. Argus X P. Boxallii . . ? 

P.Spicerianum X P. hirsutissi- |Latham. 
mum. 

P. Spicerianum magnificum X P. |Statter. 
vexillariaom superbum. 

P. Schlimii X P. vittatum. . .|Sander. 

P. Schlimiü X P. caricinum. . Bowring. 

P. Lowii X P. Hookerae . . .| Burton. 

P. barbatum X P. superbiens. .|Veitch. 

P. barbatum nigram X P. super- 2 
biens. 

P. barbatum X P. ? ? 

Swan. 


P. Dayanum X P. barbatum . 
P. insigne Maulei XP. Argus Mœnsi Heath. 
P. Curtisii X P. Lawrenceanum .|Winn. 


P. Measuresianum X P. tonsum. ‘Graves. 

P. niveum X P. barbatum . ire 

P. niveum X P. Warneri . 

P. superbiens X P. Druryi. : a 

P, niveum X P. Lawrenceanum .|Veitch. 

P. Harrisianum nigrum X P. Bo- |H. Tate. 
xallii atratum, 

P. oenanthum superbum X P. |Arthur. 
Dayanum, 

P. concolor X P. barbatum . Seden, 


. God. Lebœuf. 


Paphiopedium tessellatum 


var. porphyreum. 


Thayerianum 

The Duke ,| . 
The Gem. 

Them ur 
Théodore Bullier. 
‘MRETSITES 
‘Phetis AT 
Thibautianum . . 
‘Phorntoni 0. 0 
ÉVUS EN 
triumphans . 


Tryanowskyanum . 
Tryonianum. 

CUEPCEC CAC 
We Bond 


Umlauftianum . 
Unique 

Valerandi . , 
Van Houtteanum ,. 
Van Imschootianum 
Van Molianum . 


variopictum. . . 


Venus. CE 
venusto-Crossianum 


venusto-Spicerianum . 


vernixium 
Vervaeti . 


Vervaetianum 


vexillaritinm 
vexill-I0 . 
VIOlACeNMe ne 
VADAR 
— var. roseum, 


Wallaertianum. , 
Warneri-superbiens 
Warnhamense . 
Warocqueanum. . 
Watsonianum 
Weathersianum. 


Weidlichianum. 
Wendlandianum , 
Wiganianum 
Williamsianum. 


Windifre Hollington . 


re 


P. barbatum superbiens X P. con- 
color. 

P. Lawrenceanum X P. Boxallii 
atratum. 

P. Stonei X P. barbatum grandi- 
florum. 

P. marmorophyllum X P. insigne 
Chantini. 

P. insigne Maulei X P. Harrisia- 
num superbum. 

P. tonsum X P. villosum 

P. Sedeni X P. Lindleyanum. 

P. venustum X P. ? . 

P. Harrisianum X P. insigne 
Maulei. 

P. superbiens X P. insigne. . 

P. Spiceriunum X P. oenanthum 
superbum. 

P. oenanthum superbum X P. Sal- 
lieri Hyeanum. 

P. insigne Chantini XP. lo grande. 

P. Harrisianum X P. superbiens . 

P. barbatum Crossi X P. Argus 

P. Swanianum X P. hirsutissi- 
mum. 

P. Lawrenceanum X P. insigne 
Chantini. 

P. Lindleyanum X P. Schlimii 
albiflorum. 

P, Spicerianum X P. insigne Nil- 
soni. 


? 
Sander. 
Winn. 


Ingram. 


2 


Weitch, 


? 
Veitch. 


? 
Veitch. 


J. Hye. 


Sander. 
Tade. 


.|Godefroid-Lebeuf. 


Ingram. 


Sander. 


? 


P. niveum ? X P. Dauthieri ? . .|Van Houtte. 

P. callosum X P. insigne Chantini. ? 

P. callosum X P. concolor. ? 

P. Lawrenceanum X P. Spiceria- |Veitch. 
num. 

P. albanense X P. reticulatum. 

P. venustum X P. Crossianum. .|Dreger. 

P. venustum X P. Spicerianum .|Drewett. 

P. Argus X P. villosum. .|Veitch. 

P. insigne maximum X P. Spice- | Vervaet. 
rianum. 

P. Lawrenceanum X P. super- | Vervaet. 
biens. 

P. barbatum X P. Fairieanum .|Veitch. 

P. ? JAP: ? .|Cookson. 


P. villosam X P. hirsutissimum , 
P. philippinense X P. niveum. 
P. niveum X P. philippinense 
Roebeleni. 

. Harrisianum X P. villosum. ,. 
. Warneri X P. superbiens . 

. Curtisii X P. philippinense. 

. Warneri X P. Fairieanum . 

. Harrisianum X P. concolor 

. Leeanum superbiens X P. hir- 
sutissimum, 

P. Hartwegii X P. Schlimii. 

P. œnanthum X P. venustum,. 
P. Harrisianum* P.Ashburtoniae, 
P, villosum X P. venustum , 
P. ciliolare X P. niveum . . 


Le lo as)Eao)rofilno) 


Vuylsteke. 


.|Capt. Vipan. 


Ingram. 


? 


.|Graves. 
.| Lucas. 


F) 


À Sander. 


? 


.| Sander. 


F. Wigan. 


.| Warner. 
.| Hollington. 


Paphiopedium Winnianum 
— Witt-Smith. . 
— xanthophyllum . 
— Youngianum. . . 
— Zampa . 


Phajus amabilis 


— Cooksoni. . 
GRAVES. SOUS 
— hybridus. 

— inquilinus . . . 
_— maculato-grandifolius 


Phajolimatopreptanthe Se- 
deniana. 
— — var, r0se4. 
Phajopreptanthe irrorata 


— jirrorata var. purpu- 
rea. 
Phalaenopsis F, L. Ames 
— Amphitrite . 
Artemis . 
casta . 


Hariettae 
intermedia . 
— var. Portei. 


John Seden . 
Leda . 
leucorrhoda. 


Rotschildiana . 
Sanderiana . 
Valentini. . 
Veitchiana . 


Vesta . 


Preptanthe Barberiana . 
— Darblayana. 
= PIRAS = ee le 


Satyrium Guthriei. = 
Selenipedium (voir Paphio- 
pedium). 

Serapias Alberti 
ambigua. 
digenea . . 
Grenieril1) , 
intermedia . 
Laramberguei . 
meridionalis. 


Sophrocattleya Batemania- | 


na. 
— Calypso. . . . 


P. villosum X P. Druryi 
P. Spicerianum X P. Lowii 


P. Hookerae X P. Mastersianum . ? 
P. superbiens X P. philippinense. | Sander. 
P. Leeanum superbum X P. hir- | Vuylsteke, 
sutissimum. 
Phajus grandifolius X P. tuber- | Veitch. 
culosus. 
P. Wallichii X P. tuberculosus .|Cookson. 
P. Wallichii X P. grandifolius .|Grave. 
P. grandifolius X P. Wallichii .|Drewett, 
LP ? < ? .|Dominy. 
P. grandifolius X P. maculatus .|Veitch. 
P. grandifolius X Limatoprep- |Veitch. 
tanthe Veitchii. 
P. grandifolius X Preptantheves- |Veitch. 
tita nivalis, 
» » » 
.| P. amabilis X P. intermedia . .|Veitch. 
P. Sanderiana X P. Stuartiana .|Sander. 
P. rosea X P. amabilis . . .|Veitch. 
P. Schilleriana X P. amabilis : ? .|Hybr. nat.? 
(Iles Philippines). 
P. amabilis X P. violacea . .|Veitch. 
P. rosea X P. Aphrodite - -|Vertche 
P. rosea leucaspis X P. Aphrodite? Hybr. nat. 
(Iles Philippines). 
P. amabilis X P. Luddemanniana. | Veitch. 
| SE pe ? Veitch. 
P. Schilleriana X P. Aphrodite? .|Hybr. nat, 
(Iles Philippines). 
P. Schilleriana X P. amabilis. .|Veitch. 
P. amabilis X P. Schilleriana? .|Hybr. nat. 
P. Cornu-cervi X P. violacea? .|Hybr. (Malaisie). 
P. rosea X P. Schilleriana? . .|Hybr. nat.? 


(Iles Philippines). 
Veitch. 
.|Barber. 
Maron. 


P. Aphrodite X P. rosea leucaspis. 

P. vestita X P. Turneri 

P. Regnieri X P. vestita grandi- 
flora. 

P. vestita gigantea X P. Regnieri, 
var. Sanderiana. 

S. candidum X S. bicallosum . 


Veitch. 


.|Hyb. nat. (Cap). 


S. longipetala X S. neglecta 
S. cordigera X S. Lingua . 
S. super-longipetalo-Lingua 
S. longipetala X S. Lingua. 
S. longipetala X S. Lingua 
S. lingua X S. cordigera .|Hybr. nat. (France) 
S. Lingua X S. neglecta . . .|Hybr.nat.(France) 
Sophronitis grandifloraXCattleya Veitch. 

intermedia 
Sophronitis grandifloraXCattleya | Veitch. 

Loddigesii var. Harrisoniae 


.|Hybr. nat. (France) 
.|Hybr. nat. (France) 
.|Hybr. nat. (France) 
.|Hybr. nat.(France) 
-|Hybr. nat. (France) 


(1) Syn. S. neglecta. 


34 


Sophrocattleya Veitchiana .| Sophronitis grandiflora X Laelio- |Veitch. 
Cattleya Schilleriana. 
Stanhopea Spindleriana. .| S. oculata X S.tigrina . . . .|Spindler. 
Thunia Veitchiana(i), . Marshalliana X T. Bensoniae . | Veitch. 
Vanda Miss Joaquim , . . Hookeriana X V.teres, . .|Miss Joaquim, 
Zygocolax leopardinus(3). . maxillare ? X Colax jugosus .|Veitch. 
— Veitchii . : .crinitum X Colax jigosus . ,.|Veitch. 
Zygopetalum Clayi . crinitum X Z. maxillare. . .|Claye. 
— crinito-maxillare . crinitum X Z. maxillare, . .|Hill. 
— leucochilum. . Mackayi X Z. Burkei. . . .|Veitch. 
— pentachromum . . Mackayi X Z. maxillare. . .|Veitch. 
— Sedeni . . maxillare X Z. Mackayi. . .|Veitch. 


NNNNNNN «4H 


(1) Syn, T. Wrigleyana (T. Marshalliana X T. Bensoniae) Toll. 
(2) Syn. Zygopetalum leobardinum. 


TROISIÈME PARTIE. 


L'ORCHIDÉE, SA CULTURE, SES AMIS ET 
SES ENNEMIS. 


CEHEAPEPRE TT 


HISTORIQUE. — CULTURE RATIONNELLE. — 
PRINCIPES GÉNÉRAUX. 


I. HISTORIQUE. — Le visiteur des brillantes Floralies qui 
eurent, pendant ce siècle, une influence horticole si considérable, 
éprouvait jusqu’en 1880 autant d’admiration que de regrets 
en voyant quelques rares Orchidées, exposées par de grands 
amateurs ou par d'importants établissements. Ces belles plantes 
étaient, croyait-il, les plus difficiles, les plus ingrates, les plus 
capricieuses de toutes celles auxquelles un jardinier d'élite 
pouvait être appelé à donner ses soins. Pour cultiver les Orchi- 
dées avec quelques succès, il fallait, disait-on, posséder une 
serre chaude de construction spéciale, s’astreindre à des soins 
continus, à une surveillance incessante, s’imposer des dépen- 
ses considérables, et tout cela, dans l’espoir d’un succès douteux 
et incertain. 

Cette erreur populaire datait de loin. Au siècle dernier, la 
culture de ces plantes était réputée si difficile que, dans la 
huitième édition, parue en 1768, de son excellent Dictionnaire, le 


oo — 


consciencieux auteur anglais Miller s’exprimait en ces termes : 
« Mais comme ces plantes ne peuvent par aucun art connu 
« jusqu'à ce jour, être cultivées dans la terre, il est inutile 
« de les décrire. Si pourtant, la culture des Epidendrum » 
— c'était le nom sous lequel Linné avait réuni toutes les 
Orchidées, — « pouvait être menée à bonne fin, beaucoup de 
« ces plantes produisent des fleurs superbes et des formes 
« extraordinaires; » et plus loin : « J'ai eu 3 espèces qui 
« m'avaient été envoyées d'Amérique où elles avaient été enlevées 
« surles arbres où elles croissent. Je les plantai avec soin dans des 
« pots placés en serre, elles vinrent assez bien pour me montrer 
« leurs fleurs, puis périrent. » L'éditeur du Botanical Register 
(tab. 17) dit en parlant de l’Epidendrum nutans : « La culture des 
« Orchidées tropicales est considérée comme ne présentant 
« aucune chance de succès. C’est en vain qu’on espère, dit-il, 
« trouver des plantes pouvant remplacer les arbres variés que 
« chaque espèce affectionne et les réunir dans les limites d’une 
« serre chaude! » 

Puisque, aujourd'hui, nos jardiniers, en possession d’un art 
inconnu à leurs prédécesseurs, cultivent à merveille les Orchi- 
dées, nous n'avons plus, comme Miller, d’excuse pour ne pas 


décrire cette culture. 


II. ERREURS D'ANTAN. — Croire que les Orchidées réclament, 
toutes, des températures exceptionnellement élevées, fut une 
inconcevable erreur (1). Quand nous parlons des terres tropicales, 
ce mot rappelle à la pensée des terres chaudes. Mais en ces pays 
chéris du soleil, il s’en faut que toutes les stations soient ainsi 
fortement échauffées. Sont seuls soumis à des températures 
élevées les territoires compris entre les altitudes o et 1,500 mè- 
tres — telles sont les ferra caliente du Mexique —; leur flore est 
toujours pauvre en Orchidées. De l’avis de Humboldt, con- 
firmé par les botanistes plus modernes, les plus nombreuses et 
les plus belles Orchidées viennent des terres tempérées, spéciale- 


(x) En 1828, un ouvrage scientifique important, le Sertum Botanicum impri- 
mait que le Disa grandiflora, la belle Orchidée du Cap, devait se cultiver en 
serre chaude, alors que dans sa patrie les nuits sont souvent froides et glacées! 


 — 
ment de régions comprises entre 1,600 et 2,200 mètres d'altitude, 
c'est-à-dire de contrées dont la température dépasse rarement 
28° C et ne descend guère au-dessous de 12° C. Certaines Orchi- 
dées, les Masdevallia notamment, croissent dans des pays dont 
la température moyenne correspond à celle du mois de mars en 
Belgique; un séjour un peu long dans une serre chaude serait 
pour elles, aussi mortel qu'un hivernage sous la neige(r); de là 
deux écueils à éviter : une température trop haute, et une 
température trop basse. 


III. PREMIERS ESSAIS DE CULTURES. — Les Japonais ont 
devancé les Européens dans la culture des Orchidées. Ils n'eurent 
pas les craintes de Miller, ni celles d'Edwards, l'éditeur du 
Botanical Register. Kaempfer nous apprend en effet qu'ils culti- 
vaient avec succès à la fin du XVII* siècle l'Arachnanthe moschi- 
fera, Y'ancien Epidendrum Flos-aeris de Linné. 

La première mention d'Orchidées cultivées en Europe est 
consignée dans l’Index des plantes cultivées à Leyde, publié par 
l’illustre Boerhave (2). La remarquable Historia Plantarum 
Rariorum que Martyn publia de 1728 à 1735, mentionne Ja 
floraison du Bletia verecunda, qu’on nommait alors Helleborine 
americana(3). C'est la première Orchidée tropicale qui ait été 
signalée en Europe. Avant les introductions du D' John Fother- 
gill(4), les Cypripèdes de l’Amérique du Nord et la Vanille 
semblent avoir été cultivées, du moins en Angleterre. Dans 
la première édition de son ouvrage classique, le Gardeners’ Dic- 
tionary, Miller cite l'Helleborine virginiana flore rotundo luteo 
(C. pubescens ?) et l'Helleborine canadensis (C. spectabile). La 
première édition de l'Hortus Kewensis, parue en 1789, contient 


A 


(1) En Belgique, à l'exception de quelques espèces indigènes, aucune 
Orchidée, mème celles qui sont originaires des régions élevées et froides de 
l'Amérique du Nord, ne résiste en plein air à l’irrégularité de nos tempéra- 
tures hivernales. 

(2) Linné fait l’éloge de ce Catalogue en ces termes : « Qui inter hortorum 
« autores absolute primus est, cum nullus dictior plantarum numero vel magis 
« elaboratus prodiit unquam Catalogus. » 

(3) P. 50. Cette planche a été reproduite par Miller dans ses « Figures of the 
most beautiful Plants » (t. 145). Londres, 1760. 

(4) Cf. Introduction, page 6. 


— 490 — 


le nom de toutes les Orchidées cultivées à cette époque. Quatre 
sont des espèces tropicales, Bletia verecunda; Epidendrum fra- 
grans, E. cochleatum et Phajus Tankervillei; six espèces sont 
nord-américaines : Cypripedium spectabile, C. acaule; Liparis 
liliifolia, Calopogon pulchellus, Habenaria fimbriata et Arethusa 
bulbosa; trois espèces étaient originaires de l’Afrique australe : 
Satyrium carneum, S. coriifolium et Bartholina pectinata, et deux 
espèces étaient méditerranéennes : Serapias Lingua et Nigritella 
angustifolia. Ces plantes, curiosités fort recherchées et très 
admirées, périssaient presque toutes, leur floraison terminée. 
La culture des Orchidées était à cette époque faite absolument 
au hasard. Ce n’est que vers le milieu du XIX® siècle, qu’on 
se décida à abandonner d’anciens préjugés pour tenter une 
culture rationnelle ! 


IV. Les PRÉCURSEURS. — Dès 1835, l'illustre Lindley, dont le 
souvenir doit être rappelé chaque fois qu'on s’occupe d’Orchidées, 
avait attiré l'attention des amateurs sur la nécessité de tenir 
compte des conditions climatériques spéciales de l'habitat de 
chaque Orchidée. Décrivant l'Oncidium ampliatum dans le Bota- 
nical Register de 1835 (tab. 1699), il dit : « Il est bien connu 
« que la plus grande partie des Orchidées épiphytes croissent 
« avec la plus grande vigueur dans les forêts sombres et 
« humides des contrées tropicales; aussi nous évertuons-nous, 
« dans nos cultures artificielles, à leur donner une température 
« se rapprochant autant que possible de celle que nous croyons 
« être celle de leur patrie. Que cette préoccupation soit utile à 
«un certain nombre d’Orchidées, les superbes exemplaires 
« que nous rencontrons dans certaines collections, en sont la 
« preuve. Mais il est également évident que si ce traitement 
« convient parfaitement à un grand nombre de plantes, il est 
« tout un autre groupe fort considérable d’Orchidées auquel il 
« ne convient guère, les plantes ne survivant pas à un pareil 
« traitement. Si la majorité des Orchidées épiphytes croît 
« dans des forêts tropicales humides, une minorité fort respec- 
« table croît dans des situations extrêmement différentes. » 

Pendant les longues années durant lesquelles Lindley présida 
aux destinées du Gardeners’ Chronicle, il ne cessa de répéter que 


ri 
« les importations étaient traitées de la manière la plus sotte », 
et de rappeler aux voyageurs horticoles et aux naturalistes la 
nécessité de relever très exactement et d’une manière très 
circonstanciée les renseignements les plus minutieux sur la 
manière dont les plantes exotiques se comportent dans leur 
habitat. 

Un autre botaniste éminent, Bateman, dans l'introduction de 
son admirable travail sur les Orchidées du Mexique et du Guaté- 
mala, ajoutait aux prescriptions du grand Lindley, cette recom- 
mandation précieuse qu'il est nécessaire de donner aux Orchidées 
une période de repos. 


V. CULTURE RATIONNELLE. — C’est Joseph Cooper, jardinier 
de Lord Fitzwilliam à Wentworth, qui, le premier, entreprit de 
cultiver rationnellement des Orchidées vers 1835. En racontant 
sa visite aux cultures de Cooper(1), Sir William Hooker, le grand 
botaniste anglais, dit combien fut grande sa surprise à la vue 
de belles Orchidées, croissant dans une serre à température 
moyenne et dont l’air se renouvelait facilement et constamment. 
Paxton introduisit à Chatsworth des modifications de même 
nature, fort importantes et très heureuses dans la culture des 
Orchidées. En 1838, le D' Lindley, parlant d’une admirable 
floraison du Sfanhopea quadricornis, rendait dans le Botanical 
Register, un légitime hommage au mérite de cet éminent jardinier. 

A partir de 1860, la méthode de Cooper se généralise sur le 
continent européen. Les initiateurs du mouvement furent les 
Veitch en Angleterre, Morren et Linden en Belgique, le comte 
du Buysson, Éd. André, Godefroy-Lebeuf en France. Les 
grands établissements horticoles devinrent des écoles pratiques 
où les procédés nouveaux sont substitués aux procédés anciens. 
Les journaux horticoles popularisèrent les principes scientifiques 
qui doivent présider au traitement de ces plantes. Les serres 
d'Orchidées ne sont plus les cabanons bas et étroits de jadis; 
elles s’agrandissent et en même temps on les ouvre largement. 
Des traités pratiques paraissent chaque jour; tous rappellent à 


(1) Botanical Magazine, sub tabula 3395. 


me. Mo 
l’amateur que, pour obtenir quelque succès dans la culture des 
Orchidées, il faut les traiter, non plus comme des malades 
agonisants auxquels on mesure l'air et la lumière, mais comme 
des végétaux pleins de vie, vivant presque toujours en plein 
soleil et dans des stations fort aérées. 

Dans la liste des vulgarisateurs dont nous avons rappelé les 
importants travaux (1), nous devons inscrire les noms de D. Ca- 
meron (2), G. Gordon(s), R. Bainbridge(4), F. W. Burbidge (5), 
J- C. Lyons(6), en Angleterre; P. Duchartre(7), en France; 
L. Van Houtte(8), en Belgique. A une époque plus récente, 
nous voyons paraître successivement les traités de culture de 
H. A. Burberry (9), en Angleterre; de H. G. Goemans (10) et de 
Lucien Linden(11) en Belgique; de Quarles van Ufford(r2), en 
Hollande; de Duval (13), etc., en France. 

Amateurs célèbres. — En suivant les préceptes de la culture 
rationnelle, les amateurs d'Orchidées obtinrent des spécimens de 
culture d’une taille et d’une beauté incomparables. On les ren- 
contrait jadis dans les collections du Comte Thun, à Prague, 
du Prince Démidoff(14), à Florence, du Consul Schiller (15), à 
Hambourg, dont les catalogues sont des œuvres scientifiques de 


(1) Cf. Zntroduction, page 14. 

(2) On the Cultivation of British Orchids. Journ. Hort. Soc. Lond., vol. III, 
p. 28, 1848. 

(3) Notes on the proper Treatment of Epiphytal Orchids. 

(4) History and general treatment of Orchidaceae ; 1842. 

(5) Cool Orchids and How to grow them. 

(6) On the management of Orchidaceous plants. 

(7) Note sur le Phalaenopsis Schilleriana. Journal de la Société Impériale 
d’Horticulture de Paris, vol. VIII, p. 609. 

(8) Flore des Serres et des Fardins. Passim. 

(9) The Amateur Orchid Cultivator's Guide Book, par H. A. BURBERRY. 
Liverpool, 1894. 

(10) Tableaux synoptiques de la culture des Odontoglossum, des Cattleya et 
Laelia et des Dendrobium. Gand, 1889-1893. 

(z1) Les Orchidées exotiques et leur culture en Europe, par LuciEN LINDEN. 
Bruxelles, 1894. 

(12) Handeling tot de kennis en het kwecken van Orchidëen. Appeldoorn, 1892. 

(13) Petit guide pratique de la culture des Orchidées. Paris, 1894. 

(14) Hortus Donatensis. Catalogue des plantes cultivées dans les serres de 
S. Ex. le prince Démidoff, à San Donato, près Florence. Orchidées par J. E. 
Planchon. Paris, 1858. 


(15) Catalog der Orchideen-Sammlung von G. W. Schiller (par Reichenbach) 
Hamburg, 1857. 


RE 

sérieuse valeur; c’étaient les principales collections continentales 
de ce siècle. Après elles venaient en Belgique celles du Chevalier 
Hynderickx à Gand, du Comte Alfred de Limminghe à Gen- 
tinnes, du sénateur Cannaert d'Hamale à Malines, de H. Galeotti 
à Bruxelles, de M®° Legrelle d'Hanis à Anvers, de M. E. de 
Puydt à Mons, de M. Beaucarne à Eename, etc., et à l'étranger, 
celles de M. Pescatore à La Celle Saint Cloud en France, de 
M. Reichenheim à Berlin, W. Cattley de Barnet, les Harrison 
de Liverpool, Lord Fitzwilliam, le duc de Devonshire, Huntley, 
Bateman, J. Clowes, Th. Brocklehurst, C. Lemon, Georges 
Barker, R. Handbury, J. D. Llewelyn, John Day, Robert 
Warner, Sigismond Rucker en Angleterre, etc. etc. La plupart 
de ces grands amateurs ont vu leur mémoire préservée de l'oubli 
par des plantes qui portent leurs noms. Aujourd’hui les collec- 
tions d’Orchidées sont beaucoup plus nombreuses que jadis; 
dans tous les pays européens, des amateurs intelligents cul- 
tivent avec succès d’admirables Orchidées. 

Plantes remarquables. — Les Orchidées tropicales sont plus 
belles dans nos serres que dans leur patrie. e Il est rare, dit 
Charles André, de rencontrer à Bornéo une Orchidée en fleur. 
Dès qu’une tige florale se forme, elle est dévorée par d'in- 
nombrables insectes; les boutons n'arrivent presque jamais à 
s'épanouir. » Dans les pays où les Renanthera Lowii forment de 
véritables massifs, il est impossible de récolter des fleurs aussi 
parfaites, des racèmes aussi beaux, des plantes aussi fleuries 
que celles qu’on voit dans les serres de nos amateurs ! (1). 
N'a-t-on pas vu chez M. Warocqué un Laelia anceps ayant 
plus de 200 fleurs; chez le Baron Schrüder, des exemplaires de 
Dendrobium X Ainsworthii ayant plus de 400 fleurs; chez 
M. George Douglas, un Oncidium incuroum ayant quarante épis 
portant des milliers de fleurs; chez le Baron de Rothschild, 
en 1883, un Renanthera Lowir ayant onze racèmes mesurant 
ensemble 33 mètres ? 


(x) M. Sander a exposé, en 1892, un pied portant sept racèmes et ayant plus 
de 300 fleurs. 


Fr HORS 

VIII. CONDITIONS VARIABLES DE LA CULTURE. — Si ces condi- 
tions varient en raison de la patrie et de l'habitat de chaque 
Orchidée, elles se modifient encore d’après la température des 
pays où se fait la culture. 

L'orchidophile brésilien n’aura pas à vaincre les mêmes diff- 
cultés que ceux qui, dans nos climats tempérés, se livrent à la 
culture des Orchidées. Ces derniers orchidophiles ne devront 
jamais oublier que la culture varie d’après la latitude où ils les 
cultivent. Ainsi M. S. Yosst de Tetschen en Bohême, réussit à 
cultiver à l’air libre pendant l'été diverses Orchidées froides : 
Acropera, Paphiopedium insigne, Lycaste Skinneri, etc., même les 
Dendrobium Kingianum et les Laelia anceps. Au commencement 
du mois de juillet, il place ces plantes en plein air, dans un endroit 
à moitié ombragé, où elles se trouvent à l’abri des fortes pluies 
et du plein soleil. Au commencement de septembre, il les rentre 
dans la serre à Orchidées, et elles y fleurissent en décembre 
et janvier. Pareille culture serait insensée dans nos contrées 
du nord de la France, de la Belgique, de l'Allemagne du Nord, 
et de l’Angleterre. 


IX. PRINCIPES GÉNÉRAUX. — Certains principes généraux de 
culture, ne doivent jamais être perdus de vue : 

1° Donner aux plantes la lumière, la ventilation, l'humidité, 
la chaleur suffisantes à leur croissance et ne pas dépasser la 
quantité nécessaire. 

2° Approprier les matériaux à la nature de l’Orchidée; s’in- 
spirer des conditions normales de sa croissance, tant sous les 
tropiques que dans nos serres. Ne pas vouloir cultiver l'Orchis 
Morio ou le Disa grandiflora comme des Orchidées épiphytes, ni 
la Vanille comme une Orchidée terricole(1), ni le Masdevallia 
comme une Orchidée de l’Insulinde, etc. etc. 


(1) Il faut lire les vieux auteurs pour se rendre compte des incroyables 
contre-sens horticoles commis par les horticulteurs. Nous lisons dans le 
Botanical Magazine (sub tab. 387), que M. Vere, de Kensington, ayant reçu 
de l'Inde le Cymbidium aloifolium, le plaça dans un pot de terre plongé jus- 
qu’au bord dans la tannée d’une serre chaude. La plante ne fleurit pas, mais, 
chose plus extraordinaire, elle ne mourut pas des suites de ce traitement 
insensé! Cette expérience est une preuve indéniable de l’extrême vitalité de 
certaines Orchidées. 


SC | : nus 

3° Éloigner avec soin tous les ennemis des Orchidées et les 
champignons microscopiques nuisibles à la végétation. 

A ces prescriptions, nous ajouterons, pour les amateurs 
habitant des climats tempérés : 

4° Posséder une ou plusieurs serres convenables à la culture 
des Orchidées. 

Quant aux deux premiers points, le jardinier pourra les 
résoudre en tenant compte, non-seulement pour chaque genre, 
mais encore pour chaque espèce, des conditions climatériques 
de son habitat. Dans un même genre, les espèces présentent 
les plus grandes dissemblances, au point de vue des soins 
qu'elles réclament. Presque chaque Orchidée demande une 
instruction spéciale, car les degrés de chaleur et d'humidité 
varient de station à station, non-seulement en intensité, mais 
encore dans leur ordre et leur durée. Que devenir, hélas ! quand 
la climatologie de cette station est inconnue. Dans ce cas, le 
jardinier n’a d’autre ressource que d’étudier la conformation de 
la plante, de se rendre compte par sa structure de ses exigences 
probables. Il sera guidé dans cette étude par certains principes 
généraux de culture : il sait, par exemple, qu’une grande épaisseur 
des tissus indique que la plante réclame beaucoup de lumière, 
que c’est une preuve que dans sa patrie, elle est exposée aux 
rayons directs du soleil; il sait aussi que des feuilles minces 
homogènes, translucides comme celles des Anæctochilus indiquent 
une plante vivant dans des stations ombragées très humides, etc. 
Il est inutile, croyons-nous, de multiplier ces exemples. 


IX. DURÉE DE LA VIE DE CERTAINES ORCHIDÉES. — Malgré les 
soins les plus intelligents et la culture rationnelle la plus habile, 
toutes les Orchidées n’ont pas dans nos serres la même lon- 
gévité. Les Catasetum, Catileya superba, Chysis bractescens 
(fig. 162), Colax jugosus, Cycnoches, Diacrium bicornuium 
(g. 152), Grammangis Ellisii (fig. 112), Mormodes présentent 
des difficultés de culture telles que peu d'amateurs par- 
viennent à les tenir en vie pendant quelque temps. Quelques 
Orchidées, Bollea, Hunitleya, Pescatorea, Warscewiczella et plu- 
sieurs autres Zygopétalées dépérissent graduellement et meurent 
après quelques mois de séjour dans nos serres. Les Catileya 


a cn 


citrina (fig. 246), Laelia albida, L. majalis, Epidendrum vitellinum, 
E. nemorale, etc., et de nombreuses Orchidées des montagnes 
mexicaines ne résistent guère plus d’une dizaine d’années. De 
même que d’autres plantes sont annuelles ou bisannuelles, la 
durée de ces individualités végétales est limitée à un petit 
nombre d’années seulement. 

Les Barkeria et les Oncidium brésiliens fleurissent aisément 
dans nos serres (Oncidium crispum, O. Forbesii, O.Marshallianum, 
O. Sarcodes, O. varicosum, etc.); mais ces Orchidées s’affaiblis- 
sent d'année en année jusqu’au moment où elles meurent (1). 
Il en est de même de certains Dendrobium : D. Bensoniae, 
D. crassinode, D. Devonianum, D. lituiflorum, D. maccarthiae, 
D. Wardianum et de tous les Dendrobium negro-hirsute (2). 

Pourquoi ce dépérissement lent mais inévitable? La chaleur 
de nos serres, l'air qui enveloppe les plantes, ne renferment-ils 
pas les ressources nécessaires au renouvellement des réserves 
nutritives amoncelées dans leurs pseudo-bulbes par l’ardent soleil 
des tropiques ? Ne vivent-elles dans nos serres que des aliments 
enmagasinés avant leur arrivée ? Ceux-ci épuisés, ne trouvent- 
elles pas dans notre soleil septentrional l’activité nécessaire pour 
élaborer de nouveaux matériaux nutritifs? Ou bien, les végétaux 
d’ordre inférieur, ces champignons nourris par la plante, mais 
assimilant pour elle (2) ne peuvent-ils accomplir dans nos serres 
leur rôle de microbes bienfaisants ? 

L'état actuel de la science horticole ne nous permet pas de 
répondre à cette question. 


X. RARETÉ DE CERTAINES ESPÈCES. — Par suite des difficul- 
tés que présente la culture de certaines espèces, celles-ci, bien 
qu'ayant été introduites en grande quantité, deviennent parfois 
introuvables. Tel est le cas du joli Paphiopedium Fairieanum qui, 
en 1870, était offert par Louis Van Houtte au prix de 10 francs 
et qui est aujourd’hui fort rare dans nos collections. 


(1) Lorsque les Oncidium brésiliens commencent à s’affaiblir, soit par une 
floraison trop abondante, soit par une émission insuffisante de racines, on arrive 
parfois à les conserver et à les établir en les traitant comme des plantes nou- 
vellement importées. 

(2) Voir p. 85. 


a - / Se 

D’autres causes viennent malheureusement, dans la patrie 
même des Orchidées, compromettre l'existence des espèces. 
La fièvre d’accaparement et de destruction de certains collec- 
teurs est parfois si irréfléchie qu'ils détruisent pour le plaisir 
de détruire. Nous nous bornerons à citer quelques exemples de 
leurs déprédations insensées et de leur vandalisme regrettable. 
En 1874, un collecteur indien rencontra près de Cordoba 
(Mexique) un arbre couvert de Laelia anceps Dawsonii. C'était la 
seule station connue de cette admirable Orchidée. Il enleva tout 
ce qu'il pouvait emporter, puis il abattit l’arbre et brûla les 
plantes qu’il ne put prendre. Il vendit sa récolte à Mexico où, 
d’après Kienast-Z61ly (1), elles périrent toutes. Malheureusement 
les Indiens,excusables peut-être à raison de leur infériorité intel- 
lectuelle, ne sont pas seuls coupables de pareils actes de vanda- 
lisme. Les collecteurs de race blanche, gens plus civilisés, mais 
peut-être plus intéressés, ont souvent commis semblables méfaits. 
Des Orchidées, découvertes à peine depuis 25 ans, sont aujour- 
d'hui introuvables dans leur pays d'origine : tel est le cas de 
l'Odontoglossum blandum, récolté par Blunt en 1865 dans la 
Nouvelle-Grenade, sur la montagne de Camérone et disparu 
aujourd’hui; tel est encore celui du Dendrobium speciosum, devenu 
si rare aux environs de Sidney, sa patrie. Pourchassées dans 
leur patrie par l’avidité des collecteurs, certaines espèces ne s’y 
rencontrent plus à l'état spontané. Notre joli Cypripède européen, 
le C. Calceolus, une des plus belles espèces de la flore indigène, 
a été extirpé de la plupart de ses stations. En Suisse, où cette 
espèce abondaït autrefois, d’après l’avis de Correvon, elle n’existe 
plus qu'à l’état de rareté et on prévoit le moment où cette belle 
Orchidée aura complètement disparu. 

A côté de ces causes déplorables, il en est d’autres plus mysté- 
rieuses dues aux seules forces de la nature. Décrites même et 
cultivées pendant un moment, des espèces sont absentes à jamais 
dans leur patrie. Que sont devenus en Égypte les Papyrus si 
communs au temps d'Hérodote? Y trouve-t-on encore les fourrés 
de Lotus rose aux larges feuilles étalées, célébrés par Strabon ? 


(1) Gardener's Chronicle, année 1887, vol. I, p. 413. 


mt 
L'ile de Sainte-Hélène n'’a-t-elle pas perdu les forêts qui la 
rendaient si belle quand, en 1502, le Galicien Juan de la Cosa la 
visita? Dans cette rénovation incessante du globe, les végétaux 
changent sans cesse : pour eux surtout, il est vrai de dire que 
les espèces comme les individus se modifient, s'altèrent et se 
détruisent par des causes diverses, dont les variations de tempé- 


rature, l’action des eaux et des fluides atmosphériques sont les 
principales. 


XI. CHoïx DES ESPÈCES A CULTIVER. — L’orchidophile doit se 
guider dans le choix des espèces par la nature même des locaux 
dont il dispose. N’a-t-il qu’un jardin, il devra se résigner à 
un certain nombre d’Orchidées. Possède-t-il un appartement 
chauffé, une serre-salon, il cultivera, ou, pour être plus exact, 
il pourra conserver quelques espèces vivantes pendant un certain 
temps : Chysis aurea, Bifrenaria Harrisoniae, Lycaste Shkinneri, 
Oncidium incurvum, puluinatum, Paphiopedium insigne, P. barba- 
tum, etc., Zygopetalum Mackhayi, Dendrobium chrysanthum et 
D. nobile, Gongora galeata et G. tricolor, Coelogyne cristata et 
C. Massangeana, Xylobium squalens, Sobralia macrantha, Stan- 
hopea,, etc. Dispose-t-il d'une serre tempérée à compartiments 
chauds, il n’est guère d'espèces qu'il ne puisse cultiver. 

Ici se pose pour lui le problème le plus délicat : comment fera- 
t-il son choix? Toutes les Orchidées sont intéressantes, mais il 
en est dont le feuillage ni la fleur ne présentent aucun caractère 
saillant, aucune beauté. Les jardins botaniques, herbiers vivants, 
les cultiveront pour la plus grande joie des botanistes. Quelques 
amateurs d'élite les reçoivent dans leurs serres (1); mais la masse 
des amateurs ne s’y intéresse guère parce qu’elles leur offrent 
peu de compensation pour les soins qu’elles réclament et qu'ils 
ont un choix si étendu de belles variétés parmi tant de beaux 
genres ! 

Circonscrit dans ces limites, le problème se réduit à savoir ce 
qu’il convient d'entendre par variétés d'élite. A priori, on peut 


(1) Citons à ce point de vue les remarquables collections de M. Alfred Van 
Imschoot, de Mont-Saint-Amand, lez-Gand. Cet amateur fort érudit a réuni 
plus de 1,306 espèces (dans le sens botanique du mot) appartenant à des genres 
différents. 


RS > DS 

regarder comme variété d'élite celle dont les fleurs ont la 
forme particulière du type, un coloris intense ou tout au moins 
distinct et se séparant nettement de toutes ses rivales; elles 
doivent les dépasser en beauté au point qu’il suffira d’avoir vu 
cette variété pour ne plus l’oublier. Quand les variétés présen- 
teront un dimorphisme floral si accusé que rarement deux 
plantes offriront des fleurs complètement identiques — comme 
les Odontoglossum crispum par exemple (fig. 189), — l'amateur 
fixera son choix d’après son caprice ou son intérêt. S’il cultive 
des Odontoglossum crispum en vue de la vente des fleurs coupées, 
il choisira les variétés produisant de longs racèmes, des fleurs 
à segments larges, ovales, se recouvrant sur la moitié de leurs 
côtés ; si, au contraire, il cultive ces Orchidées pour l'ornemen- 
tation de ses salons, il admettra à côté des variétés aux pétales 
blancs teintés de rose lilas, les variétés aux macules bizarres, aux 
formes moins parfaites mais plus étranges. En règle générale, 
l’amateur, homme de goût, donne la préférence aux variétés à 
coloris franc, à teintes éclatantes ou à macules distinctes et 
bien tranchées. 


XII. RÉPARTITION HORTICOLE DES ORCHIDÉES. — Les Orchi- 
dées se divisent en deux grands groupes horticoles : les unes, 
Orchidées des régions tempérées ou boréales, se cultivent en 
plein air et en pleine terre dans nos contrées du nord; les autres, 
d’un tempérament plus délicat, ont besoin de l'abri de nos serres. 

Celles-ci se subdivisent à leur tour en Orchidées de serre 
froide, de serre tempérée et de serre chaude ou à température 
indienne. 


CHAPITRE "HT 
DES ORCHIDÉES CULTIVÉES EN PLEINE TERRE. 


I. ORCHIDÉES DE PLEINE TERRE. — Certaines Orchidées peu- 
vent être cultivées en pleine terre : Aceras anthropophora, Cepha- 
lanthera rubra, Cypripedium Calceolus, C. spectabile, Gymnadenia 
conopsea, Himantoglossum hircinum, Listera ovata, Orchis mascula, 
O. sambucina, Platanthera bifolia, etc. De même que pour les 
Orchidées exotiques, il faut tenir compte des conditions clima- 
tériques de leur station naturelle. La plupart des Orchis et des 
Ophrys ainsi que toutes les Orchidées qui viennent dans les prés 
tourbeux ou sur des pelouses riches en humus (Cephalanthera 
grandiflora, Epipactis palustris, Orchis coriophora, O. latifola, 
O. maculata, O. Morio, O. Rivini, Spiranthes australis) deman- 
dent un mélange de deux parties de terre tourbeuse, d'une partie 
de terre de gazon et d'une demi partie de sable ou de vase. 
Aux Orchidées qui croissent dans les prairies sèches ou siliceuses 
comme Cæloglossum viride, Cypripedium macranthum, Gymnadenia 
albida, G. odovratissima, Herminium monorchis, Nigritella suaveo- 
lens, Orchis globosa, O. mascula, O. ustulata, on doit donner un 
mélange d’une partie de terre tourbeuse, d’une partie de terre 
de gazon, et de deux parties de sable ou d’une partie de sable 
et de petit gravier siliceux. Les Orchidées qui végètent sponta- 
nément dans l’humus de nos bois, se plaisent dans la bonne terre 
de bruyère, sableuse, ou dans du terreau de feuilles mêlé de sable. 

Le docteur Regel a cultivé avec succès les Orchidées euro- 
péennes au jardin botanique de Zurich. Il les plantait dans 


EF XAVIER 


AFTONIT 


2 


SIAVNS VONVA 


des plates-bandes préparées de la façon suivante : il creusait la - 
terre à une profondeur suffisante pour pouvoir donner à ses 
plantes un sous-sol composé d’une couche de cailloux roulés. 
Il recouvrait sur une épaisseur d’environ 0",30, ces cailloux d’un 
des composts terreux que nous venons d'indiquer. Au prin- 
temps, il donnait de copieux arrosements surtout au moment 
de la floraison. Pendant l’hiver, il recouvrait les plantes, soit de 
branches de sapin, soit d'une couche de feuilles épaisse de 0",30 
au moins. Afin de déranger les plantes le moins possible, on se 
bornait aux sarclages strictement nécessaires. 

Regel conseille d’éviter avec soin, dans la culture des Orchidées 
terricoles, le fumier, même le simple mélange d’une terre de 
jardin fumée. C’est la conséquence naturelle d'une remarque 
souvent faite : les stations d’Orchidées disparaissent à mesure 
que la culture devient plus intensive et que les prairies notam- 
ment reçoivent des fumures animales ou fortement azotées. 

La plupart de nos Orchidées indigènes végètent à l’automne; 
d’autres en petit nombre commencent seulement à végéter au 
printemps. Dès l'automne, alors que la tige florifère de l'année 
est à peine défleurie, plusieurs espèces — le joli Ophrys Arach- 
nîtes, — développent déjà des feuilles radicales sur leurs jeunes 
tubercules. Elles devront être placées dans un endroit sec à 
l'abri des fortes gelées. Il faut éviter la chute des gouttes d’eau 
sur les feuilles des jeunes pousses. 

La récolte et la transplantation de nos Orchidées indigènes doit 
être faite au moment précis où la végétation cesse. Ce moment 
coïncide généralement avec celui de la maturité des graines. 

Après un printemps humide, les Orchidées indigènes fleuris- 
sent très abondamment dans toutes les localités, tandis qu’on en 
voit très peu en fleurs après un printemps sec. Cette observation 
ne dicte-t-elle pas la conduite que nous devons suivre dans 
leur culture? Pendant toute la période de leur développement, 
on doit arroser abondamment les Orchidées indigènes avec de 
l'eau de pluie autant que possible. Sans humidité, elles ne 
fleurissent pas et souvent même elles meurent; aussi est-il très 
utile en été de recouvrir le sol d’une couche de sphagnum. 

Bien qu'originaires de pays septentrionaux, au climat plus 
rude que celui de la Belgique, certaines Orchidées, Calypso 


35 


borealis, Cypripedium candidum, C. pubescens, Goodyera repens, 
Ophrys foliosa, ne résistent pas soit à l'humidité soit aux 
variations de température de nos hivers. Il en est de même des 
Serapias cordigera et S. Lingua. La culture en pots sous châssis 
froids ou en serre froide leur convient mieux. Il est fort difficile 
de dire à priori le sort réservé dans une localité aux Orchidées 
qu’on cultive en pleine terre, tant est grande leur sensibilité. 
M. Correvon cite à ce sujet un fait bien intéressant : le charmant 
Ophrys Mumbyana résiste à Harlem (Hollande) et n’est pas 


rustique à Genève (Suisse)! 


II. ORCHIDÉES ALPINES EUROPÉENNES. — Placé dans certaines 
conditions spéciales, l'amateur cultivera avec succès à côté des 
Orchidées indigènes, en plein air, diverses Orchidées originaires 
des Alpes et des régions montagneuses de l'Europe : Orchis 
coriophora, ©. globosa, O. latifolia, O. maculata, O. mascula, 
O. militaris, O. Morio, O. pallens, O. sambucina, O. Simia, O. ustu- 
lata, O. Spitzelii; Anacamptis pyramidalis ; Gymnadenia albida, 
G. conopsea, G. odovratissima; Caæloglossum viride; Platanthera 
bifolia ; Ophrys muscifera, O. apifera, O. Ayrachnites, O. aranifera; 
Aceras anthropophora ; Listera cordata et L. ovata. Les unes 
s’acclimatent sans difficulté et réussissent dans tous les terrains 
riches en humus, à demi ensoleillés et de nature un peu fraîche. 
D'autres exigent des conditions spéciales : les Orchis laxiflora, 
O. palustris, O. incarnata demandent un sol poreux et tourbeux ; 
les Orchis fusca et l'Herminium hircinum préfèrent les terres 
fortes, mélangées de rocailles, une exposition au levant et au 
couchant ; les Chamaeorchis alpina, l'Herminium monorchis et les 
Nigritella demandent un emplacement fortement drainé, un sol 
peu profond et mélangé de sable; enfin les Cypripedium préfèrent 
un sol fertile mais spongieux et tourbeux, et une exposition 
légèrement ombragée. 

Les espèces dont les racines sont fibreuses (Epipactis, Cepha- 
lanthera), celles qui sont stolonifères (Goodyera repens) sont 
plus difficiles à cultiver. Les Listera, les Spiranthes, les Cypri- 
pedium donnent de meilleurs résultats. En Angleterre, dans 
certains districts bien abrités, on est parvenu à cultiver en pleine 
terre le Bletia hyacinthina, mais cette Orchidée ne vient bien sur 


nos — 
le continent qu’en serre froide. De même que cette Orchidée, les 
Cypripedium acaule, C. arietinum, C. californicum, C. candidum, 
quelques Goodyera (G. pubescens, G. Menziesit, G. repens), 
réclament dans nos climats, l’abri d’un châssis vitré qui les 
garantisse des froids variables et de l’humidité de nos hivers. 
Quand on les cultive à l’air libre, il faut avoir soin pendant la 
saison froide de recouvrir ces plantes d’une légère couche de 
branches de sapin, tant pour suppléer à l’absence des neiges que 
pour éviter une trop forte humidité. Pour ce dernier motif 
surtout, la culture sous châssis froid est toujours préférable en 
Belgique. Ajoutons que de nombreuses Orchidées provenant des 
parties de l'Afrique, de l'Amérique et de l'Océanie les plus 
rapprochées du pôle austral, sont souvent cultivées en serre 


froide, alors qu'elles viennent beaucoup mieux et plus facilement 
sous châssis froid. 


CN PETR EN SPER 


CULTURE DES ORCHIDÉES EN SERRE. 


I. TEMPÉRATURE DES SERRES. — Les horticulteurs répartissent 
les serres en trois catégories : la serre froide, la serre tempérée et 
la serre chaude. Ces trois serres répondent aux besoins des trois 
grandes divisions établies expérimentalement pour la culture 
des Orchidées. La première comprend les Odontoglossum, les 
Masdevallia et toutes les espèces habitant des climats tempé- 
rés ou des altitudes élevées sous les tropiques. La seconde ren- 
ferme ces Orchidées dont les Cattleya et les Laelia forment 
le groupe le plus important; elle comprend toutes les Orchi- 
dées provenant de stations dont la température moyenne, 
quoique élevée, n'atteint point celles des terres chaudes tropi- 
cales. La troisième renfermera les Orchidées vivant dans une 
atmosphère surchauffée par le soleil et saturée de vapeur d’eau; 
celles-ci réclament des températures très élevées. On les cultive 
dans une serre qui, dans la culture, a pris le nom de serre 
à Orchidées indiennes. 

Dans chacune des serres on observera la gradation naturelle 
des températures, selon la saison et d'après l’heure de la jour- 
née. Théoriquement, la gradation par mois des températures 
diurne et nocturne de ces serres peut être établie d’après le 
tableau suivant. 


TABLEAU DE LA TEMPÉRATURE( MOYENNE DES SERRES A 


ORCHIDÉES. 
SERRE CHAUDE | SpRRE TEMPÉRÉE SERRE FROIDE 
TROPICALE, 3 s 
: ; ou à ou à 
SERRE À ORCHIDÉES 
MOIS. RUES CATTLEYA. ODONTOGLOSSUM. 
ES me f les |. Fu. 
Jour. Nuit. Jour. Nuit. Jour. | Nuit. 
, | 
Janvier: ._ ..,: | 1822 16 16-18 12 7-10 7-5 
Févricr. < - 2: | ‘15-22 16 16-18 12 10-12 | 7 
Mrs 1e a, L:Prxs-2n 16 16-18 12 12-16 | 8 
AVRIL > 1201. 1 18-22 16 16-18 12 12-16 10 
BRAS. . 1] 22-224 18 18-22 16 16-18 12 
Jun. -0 | 2427 22 22 18 16-18 "1, 13 
Jeilet; 202. .lv2s30 22 22 18 16-22 12 
AGE.) + Lu L'iN 24-30 22 22 18 1622 |: 12 
Septembre . . .| 24-27 22 22 18 16-18 | 12 
Octobre . . . .] 22-24 18 18-22 16 14-16 10 
| 

Novembre. . . .] 18-22 16 16-18 12 12-14 | 8 
Décembre. . . .| 18-22 16 16-18 12 10-12 | 7 


Ces températures sont les moyennes(2) que le jardinier doit 
s’efforcer d'obtenir dans les serres affectées à chacun de ces 
groupes. Les Orchidées ne périssent pas toutes fatalement si 
la température descend accidentellement au-dessous de ces 
moyennes. Les Odontoglossum ne meurent pas si la tempéra- 
ture hivernale de la serre descend même à — 2° C, mais mieux 
vaut épargner à ces plantes cette expérience périlleuse : elles 


ne s’en porteront que mieux. Il convient en outre de tenir 


(1) La température est énoncée en degrés centigrades. 

(2) Certaines espèces mexicaines, telles que les Caftleya citrina, Epidendrum 
vitellinum, Laelia anceps, Laelia autumnalis, etc., etc., se cultivent mieux en 
serre froide pendant leur période de repos et en serre tempérée pendant la 
période de végétation. 


compte des changements de température occasionnés par le 
rayonnement du soleil pendant le jour et par le refroidissement 
quotidien de la température matinale. Résumant ces multiples 
indications, nous avons essayé de tracer dans le tableau ci-contre, 
la marche de la répartition de la chaleur normale dans les trois 
genres de serres dont nous nous sommes occupés. 


II. SERRE A ORCHIDÉES. — Certaines plantes, — telle, entre 
autres, l’admirable Nymphéacée de l'Amazone, la Victoria regia, 
— ne peuvent être cultivées que dans des serres spéciales. 
L’Orchidée n’a pas d’exigences pareilles : elle se contente d’une 
serre ordinaire peu élevée, construite de manière à pouvoir 
donner beaucoup d’air, beaucoup de lumière et la chaleur néces- 
saire. L’amateur choisira un emplacement bien aéré, abrité 
contre les grands vents, dans un endroit où l’air contiendra le 
moins de gaz carbonique possible. Si la serre est à double 
versant (fig. 253), on l’oriente du nord au sud de manière à 
donner aux plantes le plus de rayons lumineux. Près de la façade 
exposée au nord,on place les espèces exigeant une lumière diffuse 
et demandant la plus grande humidité. Si la serre (fig. 258) n'a 
qu'un versant (1), on lui donne l’orientation du sud : car, pendant 
les jours courts de septembre à avril, les plantes recevront ainsi 
le maximum de radiations lumineuses. 

La meilleure forme de serre à Orchidée est celle à double 
versant rectiligne (fig. 253) : elle est fermée aux deux extrémités 
par des châssis perpendiculaires ayant des carreaux droits. La 
porte sera située du côté opposé à celui où setrouvera la chaudière 
du thermosiphon. Même dans les serres les plus chaudes, il faut 
veiller à ce que tout au moins une partie des châssis puissent 
souvrir. Au cas où l’orchidophile cultive sous la même toiture 
vitrée des Orchidées de tempérament différent, il divisera la serre 
en trois parties au moyen de cloisons vitrées et règlera la distri- 
bution du chauffage d’après la destination du compartiment (2). 


(1) Pareille serre, adossée à un mur, présente un inconvénient sérieux : les 
plantes sont privées du soleil pendant de longues heures. 

(2) En Angleterre, les serres où l’on cultive les vignes et les pêchers en vue de 
la production hâtive, sont fortement chauffées dès le mois de février; on est 


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"HŒIOUX HAMAS 


— 508 — 


La maçonnerie inférieure se fera en briques ou en d’autres 
matériaux résistants : elle s'élève en général à o",70 au-dessus 
du sol. Cette maçonnerie supporte une partie vitrée verticale de 
0,50 à 0,70 de hauteur sur laquelle repose la toiture. Celle-ci a 
une inclinaison qui varie d’après les latitudes. Le toit est formé 
de barres et de barrettes à feuillures plus ou moins fortes 
soutenant les vitres. De chaque côté court une tablette (5). Au 
centre de la serre, une tablette est posée sur des supports ayant 
la hauteur de la maçonnerie externe. Sous les tablettes, on 
établit des bassins en ciment (j) où se trouve l'eau destinée aux 
arrosages et aux seringages. Sous la tablette centrale, quand on 
dispose d'une distribution d’eau, on place un tuyau (f) percé de 
trous et pouvant servir en même temps à alimenter d’eau le 
bassin et à asperger économiquement les sentiers. Ceux-ci ont 
une largeur d’un mètre à 1",20 dans les serres d’amateurs. 
Rien ne refroidit plus l’enthousiasme des visiteurs que la 
marche en file indienne dans une serre trop basse et trop 
étroite. Les sentiers seront bien damés, recouverts de cendrée 
ou de gravier : quelques amateurs emploient les carreaux en 
ciment munis de rainures par lesquelles l’eau non absorbée 
s'écoule dans le sol. Les tablettes latérales (:) auront de o",90 à 
1 mètre de largeur. La tablette centrale, qui n’est, somme toute, 
que la réunion de deux tablettes latérales posées dos à dos, ne 
doit pas dépasser deux mètres vingt centimètres. 

La circulation de l’air autour des Orchidées étant une condition 


parvenu à y cultiver avec succès un certain nombre d’'Orchidées : Dendrobium 
Ainsworthii, D. chrysotoxum, D. crassinode, D. Findleyanum, D. heterocarpum 
D. Leechianum, D. lituiflorum, D. luteolum, D. nobile, D. Pierardi, D. pri- 
mulinum, D. suavissimum, D. thyrsiflorum, D. tortile, D. Warvrdianum, Laeiia 
albida, L. anceps, L. autumnalis, les Sobralia, les Thunia, les Vanda suavis, 
V.tricolor, V. cœrulea, V.insignis, V. Kimballiana, les Barkeria, les Catasetum, 
les Cattleya labiata Mossiae, C. l. Gaskelliana, C. l. Warscewiczit (gigas), 
C. Harrisoniana, C. 1. Trianae, etc., etc., les Cœlogyne corrugata, C. cristata 
C. Massangeana, C. ocellata, C. Sanderiana, les Cymbidium eburneum, C. Lo- 
wianum, les Paphiopedium amandum, P. Aygus, P. Arthurianum, P. Ashburto- 
niae, P. barbatum, P. Boxallii, P. cardinale, P. Crossianum, P. Harrisonianum, 
P. hirsutissimum, P. insigne, P. Lathamianum, P. Leeanum, P. nitens, 
P. œnanthum, P. purpuratum, P. Sallierii, P. Schlimii, P. Sedeni, P. Spiceria- 
num, P. venustum, P. villosum, etc. 

Toutes ces Orchidées ont besoin d’air et de chaleur aux mêmes époques que 
les vignes soumises à la culture forcée. 


primordiale de réussite dans la culture, l’orchidophile moderne 
doit éviter de placer les pots côte à côte sur la cendrée ou sur des 
cailloux. Les tablettes sont à claire voie ou bien recouvertes de 
cailloux du Rhin bien lavés (1), blancs et bistrés. Leur nuance 
forme un fond sur lequel la teinte verte des feuilles ressort très 
bien. 

Sur ces tablettes on dispose des étagères en gradins isolés 


NS NE 
L a = = "hs —4 


Fig. 253. — Coupe transversale d'une serre. 


et espacés. Chaque gradin est formé de lattis étroits (0",07) et 
assez distants (0,03). Les Orchidées les plus faibles seront pla- 
cées sur les gradins supérieurs, afin de se trouver le plus près 
possible du vitrage. Le dernier gradin se trouvera à environ 0,30 
du vitrage. Leur largeur minima sera de 0,25. Sous les tablettes 
circulent les tuyaux du thermosiphon. 

Dans les côtés droits de la maçonnerie et de la partie vitrée, 
comme dans le toit vitré, seront disposés des ventilateurs 


(1) On les lave chaque année au printemps et à l'automne dans une eau 
légèrement additionnée de soude. 


(c, d, e). Au-dessus du toit vitré, une armature légère, en fer, 
sert de support aux rouleaux (a, b) des toiles qui ombrageront 
la serre. 

Si l'orchidophile peut consacrer plusieurs serres à ses cultures, 
il leur donnera des proportions moindres : 15 mètres de longueur 
sur 5%,50 de largeur et 4 mètres de hauteur. Ce sont les dimen- 
sions préconisées par M. le comte du Buysson. 

De nombreux amateurs réunissent aujourd’hui les serres 
par un couloir vitré. Cette disposition est excellente. 


III. LUMIÈRE. — La lumière est indispensable à la formation 
et à la maturation des pseudo-bulbes; elle est donc la cause 
première de la richesse, de l’abondance et de la beauté des fleurs. 
Certaines Orchidées, Calanthe, Lycaste, Dendrobium, Odonto- 
glossum, émettent souvent dans nos serres des pseudo-bulbes 
plus vigoureux que dans leur pays natal, si on a soin de leur 
donner beaucoup de lumière pendant leur végétation. 


IV. MAÇONNERIES. — Les maçonneries latérales ne doivent 
jamais dépasser la hauteur des tablettes. Elles seront faites 
avec soin, les briques rejointoyées et cimentées si possible, 
recouvertes d’un crépissage afin d'empêcher les insectes et les 
limaces de se loger dans des cavités où ils seraient à l'abri des 
recherches les plus minutieuses. Le chaulage annuel des murs 
est une mesure hygiénique qu’on ne saurait négliger. 


V. PARTIE VITRÉE. — La partie droite comprise entre la 
toiture et la maçonnerie, sera fermée au moyen de châssis vitrés 
perpendiculaires. Ces châssis seront en fer ou en bois, mais de 
préférence en bois de chêne ou en pitchpin, les plus résistants et 
les plus durables de tous les bois. 

En hiver, la température de l’air extérieur occasionne, dans 
les serres en fer, une condensation assez abondante, d’où un 
ruissellement abondant et souvent des taches sur les plantes(i). 


, 


(x) Dans les serres en fer il est presque impossible d'éviter la rouille, même 
en peignant, au moins une fois l’an, les barrettes de fer. Les gouttes d’eau 
venues sur les endroits rouillés produisent des taches sur les feuilles et nuisent 
à l’aspect de la plante. 


Les serres construites en fer, quoiqu’ayant une durée plus 
longue, demandent annuellement des soins d’entretien plus 
considérables et plus minutieux. Les petites barres à feuillures 
seront toujours en fer, le refroidissement et la condensation 
qu'elles peuvent produire étant fort peu sensibles. Elles ont 
l’avantage de laisser pénétrer dans les serres beaucoup plus de 
lumière. En fer ou en bois, les barres des châssis doivent être 
munies d’une rainure permettant à l'humidité condensée de 
s’écouler tout le long de ceux-ci, de manière à éviter la chute de 
gouttelettes d'eau froide sur les feuilles ou sur les fleurs. Dans 
les serres chaudes où la condensation est plus abondante, on 
place souvent des gouttières en zinc sous les barres transversales. 

Les châssis latéraux perpendiculaires seront placés sur 
pivots(1) (fig. 253, d). Ils s’ouvriront de l’extérieur au moyen 
d’une poignée. 

Quand il est possible de faire pivoter le châssis sur sa base, on 
adoptera cette disposition, qui permet d'éviter les courants d’air 
vifs et directs. 

Les barres à feuillures seront écartées le plus possible. Elles 
seront de deux dimensions si elles sont faites en bois; celles 
des travées seront les plus fortes afin de consolider la toiture de 
la serre. 

Quelle est la meilleure inclinaison à donner au toit de la 
serre? Étant donné que la serre doit permettre à l’orchidophile 
d'utiliser le plus possible la chaleur et la lumière solaires, 
l’inclinaison de la serre devrait être mobile de manière à ce que 
les rayons du soleil puissent venir frapper directement les 
plantes. Ce serait l’idéal, mais ne pouvant l’atteindre, il faut se 
contenter d’une inclinaison moyenne; la plus convenable dans 
notre pays varie entre 25° et 35°. De cette manière, la serre n’est 
pas trop élevée et sa pente est suffisante pour l’écoulement des 
eaux pluviales et des eaux de condensation. 

Les vitres doivent être mastiquées avec soin, afin d'éviter 
l’entrée de l’eau lors des lavages ou des pluies, ainsi que l'air 
froid pendant l'hiver. 


(1) Les charnières ne conviennent guère à moins d’être confectionnées en 
cuivre. 


VI. OMBRAGE DES SERRES. — Les Orchidées ont besoin de 
beaucoup de lumière pour élaborer leurs réserves nutritives. 
S'en suit-il qu'elles peuvent être exposées aux rayons directs du 
soleil tombant en plein midi sur le vitrage de la serre? Évidem- 
ment non. En ces heures où le soleil, même dans nos climats, 
projette des rayons vifs et ardents, il faudra ombrer pour proté- 
ger momentanément les plantes des coups de soleil souvent si 
meurtriers. Les ombrages fixes doivent être abandonnés. Ils ne 
permettent pas de donner aux plantes assez de lumière le matin 
et le soir quand le soleil n’est pas à craindre. 

De novembre à la fin de février, il n’est pas besoin d’ombrer 
la serre. En octobre, il est rare que le soleil ait assez de puis- 
sance pour nécessiter l’emploi d'écran, mais les rayons du soleil 
de mars sont parfois très ardents. Succédant aux jours sombres 
de l’hiver, ces rayons forcent d'autant plus à ombrer les plantes 
que celles-ci ont été plus longtemps privées de lumière. Pendant 
l'été, ce n’est guère que de neuf heures du matin à six heures 
du soir que les Orchidées doivent être protégées. 

Les plantes fortement ombrées acquièrent une belle couleur 
verte. Beaucoup d’Orchidées : Cattleya, Epidendrum, Laelia, 
Odontoglossum, Oncidium, Sobralia, etc., cultivées sous un 
ombrage permanent, fleurissent mal et souvent même ne fleu- 
rissent pas. Certaines Orchidées (Brassavola, Epidendrum 
Parkinsonianum, etc., Oncidium splendidum, Vanda teres, V. Hoo- 
keriana, etc. etc.) supportent parfaitement un soleil même 
ardent : les Laelia anceps, autumnalis, et en général toutes les 
Orchidées mexicaines ne doivent être abritées qu’au moment le 
plus chaud de la journée, quand les feuilles sont déjà chaudes 
au toucher. Il n’en est pas de même du groupe d’Orchidées 
dépourvues de pseudo-bulbes — Pescatorea, Warscewiczella, 
Bollea, — ni des Chysis, des Paphiopedium, des Masdevallia, des 
Trichopilia, etc. Croissant dans la profondeur des forêts, sur 
des rochers, des troncs ou les branches inférieures des arbres, 
ces Orchidées réclament l'ombre ou plutôt une lumière diffuse. 
Les rayons directs du soleil les font languir. On doit donc les 
ombrager. 

Le meilleur ombrage sera toujours celui qui laissera péné- 
trer dans la serre le plus de lumière diffuse. A ce titre, il faut 


fn fu mt th tas ts ds) LÉ dr séboéd midi 


= pri — 
recommander l'emploi d'un canevas de toile à larges mailles, 
grossièrement tissée. On le cloue sur deux rouleaux mobiles 
(Gg. 253 a, b) de 0,05 de diamètre. Ce store roulant permet 
d’abriter rapidement et facilement les Orchidées à l'heure où le 
soleil est trop ardent. Placé à l'extérieur de la serre, il s’enroule 
au-dessus du faîte et la manœuvre s’en fait très facilement au 
moyen d’une roue à gorge, d’un diamètre quelque peu supérieur 
à celui du rouleau et placée à l’extrémité de celui-ci. 

D’autres ombrages mobiles sont encore employés : citons les 
claies formées de lattes articulées(r) fixées au sommet de la serre 
qui se relèvent en s’enroulant au moyen d'un jeu de poulies ou de 
ficelles; les treillages de grandeur variable, appliqués sur le 
vitrage et pouvant être facilement enlevés et replacés en quelques 
minutes à chaque changement de l’état du ciel. Des crochets en 
fer, fixés à la charpente extérieure de la serre, les maintiennent 
sur le vitrage. 

Le store peut encore être utilisé pendant les nuits d'hiver lors 
des fortes gelées : il garantit la serre et les plantes placées près 
du vitrage(2), au même titre et de la même façon que les paillas- 
sons, et il permet en même temps d'éviter la condensation d'une 
grande partie de l'humidité sur les vitres. 


VII. AÉRATION DE LA SERRE. — Comme les animaux renfer- 
més dans un bocal, les plantes cultivées en serre exigent, pour 
pouvoir vivre, le renouvellement continuel de l'air, renouvel- 
lement plus ou moins rapide d’après la nature des plantes, la 
quantité d'air nécessaire à leur croissance variant même pour 
chacune d’entre elles d’après l’état de sa végétation. Les Orchi- 
dées épiphytes sont naturellement plus avides d'air que les 
Orchidées terricoles. Les Orchidées à feuilles minces, dit un 
amateur fort compétent, M. Alfred van Imschoot, ainsi que les 
Lycaste, les Calanthe, les Zygopeialum, etc., réclament une 
puissante ventilation. La quantité d'air, de lumière, de chaleur 
et d'humidité est pour toutes question de vie ou de mort. Un fait 


(1) Ces lattes de 0®,024 de largeur moyenne sont espacées de 0,005. 

(2) Pendant les nuits froides d'hiver, le jardinier doit toujours avoir soin 
d’éloigner du vitrage momentanément les plantes placées en pots ou en 
paniers. 


cr — 
démontre jusqu'à l’évidence la nécessité de donner aux Orchidées 
un air pur et sans cesse renouvelé. Il nous est rapporté par 
Warscewicz. Cet excellent observateur nous raconte qu’en Amé- 
rique à 2,600 mètres d'altitude, les Trichopilia se rencontrent 
souvent sur les branches des chênes ou des Capania; ils y 
croissent à 7 et jusqu’à 14 mètres du sol. Si par hasard l’arbre 
vient à tomber, brisé par la tempête ou abattu par la main de 
l’homme, la plante, se trouvant dans un milieu moins aéré, 
languit, dépérit et meurt. 

Le renouvellement de l'air devient une nécessité absolue 
lorsque les rayons solaires échauffent la serre et l’inondent d’une 
lumière trop brusque et trop forte. La ventilation des serres à 
Orchidées doit être établie de manière à amener aux plantes 
beaucoup d’air. D'un autre côté, il faut éviter que l’air froid 
frappe directement les plantes; celles-ci brusquement refroidies 
cessent d’absorber. 

L’aération se fait en toute saison, mais elle varie d’après la 
nature des Orchidées. Dans la serre à Odontoglossum, dès que 
la température extérieure est de + 5°C, on donne de l’air ; quand 
elle atteint 8°C, on aère plus longtemps; quand elle est de 1o°C., 
on ouvre tous les appels d’air (fig. 250 c) et un ventilateur sur 
deux (fig. 250 c et d); quand le thermomètre marque à l’air libre 
L 15°C, on ouvre tous les ventilateurs. 

Pour les Orchidées à tempérament plus chaud, l’introduction 
de l’air froid en hiver serait souvent dangereuse. Dans ces serres 
le renouvellement de l’air est cependant une des conditions de 
vie de la plante : il est donc nécessaire d’introduire de l’air 
chaud dans la serre. 

Les aérothermes ou appareils de chauffage à air chaud, sont 
abandonnés; tantôt surchauffé et sec, l’air brûle les jeunes 
pousses; tantôt saturé d'humidité, il devient plus nuisible encore. 

I1 faut éviter, même en été, les courants d'air qui frappent les 
feuilles ou les fleurs. Le renouvellement de l’air doit avoir lieu 
presque insensiblement, surtout dans les serres chaudes. 

La meilleure ventilation d’une serre s’obtient au moyen d’ou- 
vertures réparties dans la maçonnerie inférieure (fig. 253, €), 
dans la partie vitrée latérale (fig. 253, d) et dans la toiture de la 
serre (fig. 253, c). Dans la partie inférieure de la maçonnerie, à 


Rs — 
0%,30 au dessus du sol, il convient de ménager des ouvertures 
ayant de 0®,60 sur 0®,40. Au milieu de chacune d'elles, on 
encastre une tige de fer, parallèlement au plus grand côté; une 
planche de bois s’agrafe et pivote sur cet axe. Ce ventilateur, 
le plus primitif de tous, est aussi simple qu'économique; on 
peut au moyen d'une crémaillère régler l'entrée de l'air. 
Quelques constructeurs ont imaginé des installations spé- 
ciales. Ils posent en dehors des fondations des tuyaux de 
drainage traversant la maçonnerie; ceux-ci aboutissent à un 
petit puits extérieur qu’on peut fermer au moyen dun cou- 
vercle, et débouchent dans la serre au-dessous des tuyaux de 
chauffage. Ils sont également munis d’une fermeture permet- 
tant de les obturer complètement quand la température de l'air 
extérieur est trop basse. Dans son remarquable ouvrage : Les 
Serres-vergers(1), M. Ed. Pynaert indique une heureuse modi- 
fication de cet appareil permettant de le convertir à peu de frais 
en un ventilateur à air chaud (fig. 254). 
Il suffit d’entourer un des tuyaux de 
départ — ce sont les plus chauds — le 
plus rapproché du mur, d'une enve- 
loppe cylindrique en cuivre, en zinc 
ou en fer blanc. Cette enveloppe (4), 
fermée aux deux bouts, est composée 
de deux demi-cylindres ajustés à char- 
nières, afin que l'appareil puisse être 


Fig. 254. — Coupe verticale du 
placé ou déplacé à volonté; son dia- ventilateur à air chaud. 


mètre doit être plus grand de deux centimètres environ que celui 
du tuyau qu’elle est destinée à envelopper. A la partie inférieure 
de l’une des extrémités et un peu sur le côté, vient s'adapter 
un petit tuyau (b) qui traverse le mur (4) et met le cylindre en 
communication avec l’air extérieur (b’); à l’autre extrémité 
et à la partie supérieure se trouve une petite bouche (4), au 
moyen de laquelle on peut régler l’entrée de l’air chaud dans 
la serre. 

Ce ventilateur à air chaud n'est pas suffisant pour les serres de 


(1) Les Serres-vergers. — Traité complet de la culture forcée et artificielle des 
arbres fruitiers par ED. PYNAERT. 4° édition. Gand, Ad. Hoste, 1892. 


— 516 — 


grande dimension.Plusieurs amateurs emploient de préférence un 
appareil spécial imaginé par un constructeur anglais, M.Ormson, 
et dont la figure 2541 donne la coupe. C’est un coffre rectangu- 
laire en fer embrassant la rangée de tuyaux de chauffage, large 
de 0®,40 à 0",50. Ce récipient est muni à sa partie supérieure 
d'une bouche, et à sa partie inférieure d’un tube qui le met en 
communication à travers le mur de la serre avec l’air extérieur. 

Un aérage énergique a encore pour but de faire disparaître 
les vapeurs délétères continues dans tous les locaux fermés, et 
de ramener la température au degré normal lorsque l'intensité 
des rayons solaires l'élève trop. Ces considérations expliquent 
pourquoi, même dans les serres à Orchidées indiennes, une 
bonne ventilation est indispensable. Dans ces serres toutefois il 
faut agir avec grande prudence. La place des Angraecum, des 
Aerides, des Bollea, des Coryanthes, des Huntleya, des Paphinia, 
des Pescatorea, des Phalaenopsis, des Saccolabium doit être surtout 
choisie de telle façon que ces plantes ne subissent pas l'influence 
desséchante des courants d'air. 

La porte de la serre, ouverte en été, forme un ventilateur si 
puissant et si énergique, quil importe de soustraire les plantes 
voisines à l’action directe de l’air extérieur. On y obvie au moyen 
d'un châssis garni d’un canevas à mailles plus ou moins serrées. 

Divers systèmes ont été préconisés pour faciliter le maniement 
des ventilateurs. L'un des meilleurs est celui de la serre à 
Orchidées du jardin botanique de Bruxelles : il donne toute 
satisfaction au savant chef des cultures, M. Lubbers. 

« Les ventilateurs ou châssis mobiles de la toiture, m'écrit-il, 
s'ouvrent par le haut. Ils sont munis, à leur partie supérieure, 
d'un levier auquel est fixée une chaîne plate qui s’enroule sur un 
arbre de couche placé à quelques centimètres du faîte de la serre 
à l’intérieur. Cet arbre de couche est mis en mouvement par une 
manivelle. Si on ne désire pas ouvrir tous les ventilateurs à la 
fois, il suffit de détacher le crochet qui fixe la chaîne au levier des 
châssis que l’on veut tenir fermés. 

« La ventilation par le bas s’effectue au moyen de glissières 
placées dans des portes en tôle, fermant les ouvertures ménagées 
dans la maçonnerie et mesurant 0",45 de large sur 0,25 de haut. 
L'air qui s'introduit par les glissières passe entre les tuyaux de 


XXVII 


PL. 


ti — 
chauffage, après avoir traversé une toile ou canevas grossier. Il 
pénètre dans la serre, suffisamment réchauffé pour ne pas nuire 
aux plantes. 

La ventilation n'est point soumise à des formules précises. 
Si, pendant la grande ardeur du soleil, elle doit surtout être 
active afin de maintenir à l'intérieur de la serre une tempé- 
rature moins élevée, la ventilation ne doit pas être suspendue 
quand le soleil est voilé par des nuages. Alors son utilité est 
encore indiscutable : elle active l’évaporation de l'eau, absolument 
nécessaire dans la culture des Orchidées. Si l'air extérieur était 
trop froid, il faudrait chauf- 
fer la serre plutôt que de 
s'abstenir de la ventiler. 

Ilest évident que la dimen- 
sion des ventilateurs doit 
varier d'après celle de la 
serre. On admet générale- 
ment le rapport suivant entre 
la superficie totale du vitrage 
et celle des ventilateurs 
dans toute serre à Orchi- 
dées froide (Odontoglossum, 
Lycaste, etc.), il convient 
de donner aux ventilateurs Fig. 254bis. — Ventilateur à air chaud de 
une surface équivalente au MED ET 
dixième de la surface totale de la serre; dans les serres à Orchi- 
dées indiennes, la proportion est d'un vingtième. 

Dans les pays où la chaleur solaire est trop intense, on obtient 
le rafraîchissement de la serre en été, en amenant sur le faîte de 
celle-ci un tuyau perforé de trous nombreux qui laisse jaillir en 


L//LOZL 


jets très fins, l’eau amenée sous pression. Celle-ci s'étale sur la 
toiture et y détermine à peu de frais une évaporation abondante, 
et par suite un refroidissement efficace. Dans nos pays septen- 
trionaux, ces mesures sont superflues. 

Dans les serres à Orchidées colombiennes (Odontoglossum, 
Masdevallia, etc.) qui demandent en été, une température rafraî- 
chie, on mouille les chemins et les tablettes, trois fois par jour : 


le matin à l’apparition des premiers rayons du soleil, à midi et le 
36 


— 518 — 


soir vers six heures. Après ce troisième bassinage, on ferme les 
portes et on ne laisse ouverts les ventilateurs que si on prévoit 
une nuit chaude. 

Il faut toujours éviter l’échauffement du vitrage surtout dans les 
serres basses. Les ombrages (toiles ou claies) dont nous avons 
préconisé l'emploi pour préserver les plantes d’une lumière trop 
vive, rendent de grands services à ce point de vue, surtout quand 
on les place à quelque distance du toit vitré. Plus l’ombrage est 
éloigné du vitrage, moins celui-ci s’échauffe et, comme l’ombre 
projetée par les toiles ou claies varie d’intensité suivant leur 
éloignement ou leur rapprochement du vitrage, l’orchidophile 
trouvera un avantage sérieux, tant au point de vue de l’échauf- 
fement du verre que de la répartition de la lumière, à placer ces 
ombrages à une distance de o",20 ou 0",30 du vitrage. 


VIII. HUMIDITÉ ATMOSPHÉRIQUE. — Dans la culture des 
Orchidées, plus peut-être que dans toute autre culture, l’eau est 
un des facteurs les plus importants de la végétation. Pendant la 
période de repos, les Orchidées ne demandent pas d’eau; l’humi- 
dité atmosphérique leur serait plutôt nuisible qu’utile. Mais, cette 
période terminée, la végétation commence et l'humidité est 
indispensable; elle devient même pour certaines épiphytes et 
pour les Orchidées indiennes, une condition essentielle de la vie. 

La ventilation enlevant une grande partie de l'humidité de l’air, 
il faudra répandre dans la serre d'autant plus d’eau que la venti- 
lation est plus énergique. Il ne suffit pas, en été, d'arroser les 
plantes dans les serres chaudes et tempérées; il faut bassiner à 
grande eau les sentiers et les tablettes, et même parfois, serin- 
guer le soir les tuyaux. Ces bassinages seront de plus en plus 
abondants à mesure que le soleil sera lui même plus ardent et 
que la ventilation aura rendu l'air de la serre plus sec. L’orchi- 
dophile devra les règler sur les indications simultanées de 
l'hygromètre et du thermomètre. Au printemps et en été, c’est- 
à-dire pendant la période de croissance de la plupart des 
Orchidées, l'humidité atmosphérique de la serre doit être plus 
considérable qu’en automne. 

Certains amateurs font construire sous la tablette centrale, un 
bac cimenté qu’ils tiennent constamment plein d'eau (fig. 253,7). 


sd ide dns ici 


510 — 
Ce système est excellent : il maintient un certain degré d’humi- 
dité dans la serre et permet au jardinier d'avoir toujours sous la 
main, pour ses arrosages, une eau dont la température diffère 
peu de celle de la serre. On évite de la sorte les refroidis- 
sements brusques, les transitions subites de chaleur et de froid. 


IX. DÉCORATION DE LA SERRE. — Le désir de faire admirer 
leurs fleurs, non pas dans un bouquet, mais sur les plantes 
mêmes, est si naturel que beaucoup d'amateurs — et nous ne 
pouvons que les approuver — réservent dans leurs serres un 
compartiment spécial, près de l'entrée, pour y placer les Orchi- 
dées fleuries. 

Ils y cultivent des Fougères (Asplenium, Adiantum, Pteris, 
Nephrolepis, etc.), des Palmiers et quelques plantes à feuillage 
ornemental. Le comte du Buysson recommande d'admettre dans 
ce salon de la serre les Ayistolochia elegans, les Ceropegia, les 
Clerodendron, les Echites, les Dipladenia splendens, les Hoya, les 
Rhodochiton volubile, les Siephanotis, etc. Nous ne partageons pas 
son avis. La plupart de ces plantes ont un feuillage large, épais et 
compact. L'ombre qu’elles projettent est trop forte et alors même 
qu’on a eu soin de choisir des espèces qui ne prennent pas de 
vermine, ces plantes laissent tomber sur les Orchidées placées 
sur les tablettes, des débris végétaux qui tachent les feuilles, si 
on n'apporte pas un soin minutieux à les enlever. 

La température de cette partie de la serre, de ce salon d’expo- 
sition, sera assez chaude pour ne pas nuire aux Orchidées, et 
non point si chaude qu’elle incommode les visiteurs y faisant un 
séjour quelque peu prolongé. Elle ne doit pas être suffisante 
pour activer la végétation au point d'abréger la durée de la 
floraison. 

Quelques amateurs font précéder la serre d’un avant-corps 
vitré de quelques mètres de profondeur; salle d'attente bien 
plutôt que salle d'exposition, elle sert à la fois de laboratoire, de 
salle de rempotage, etc., et elle empêche l’entrée directe de l’air 
froid par la porte d'entrée pendant les rigoureuses journées 
d'hiver. Pareille construction se comprend chez un jardinier, 
mais pas chez un amateur. Certes un « laboratoire » est partout 
utile, indispensable même, mais il ne doit pas servir de salle 


d’exposition. Il vaut mieux l’établir à l’autre extrémité de la serre, 
1à où les visiteurs ne pénètrent pas. Ce réduit servira en même 
temps de magasin pour la poterie, le sphagnum, la terre, les 
tessons, etc. 

Certaines plantes forment, placées sur les tablettes de la serre, 
un heureux contraste avec les Orchidées. Citons tout d'abord les 
Palmiers : il en est de charmants pour toutes les serres et 
pour toutes les bourses. Dans la serre à température tropicale, 
l'amateur peut encore cultiver des Dioscorea, des Maranta, des 
Dieffenbachia, des Alocasia, des Eucharis, des Gardenia, des 
Nepenthes, des Hibiscus, des Ixora, des Poinsethia, etc., etc.; des 
Fittonia, des Peperomia, des Sonerila, des Bertolonia, des Cala- 
mus, etc.; dans la serre tempérée, des Ficus, des Pteris, des 
Adiantum, des Bromelia, des Begonia, des Allamanda, des Anthu- 
yium, des Ayristolochia, des Bougainvillea, des Hoya, etc., ainsi 
qu’un grand nombre des plantes qu'on peut cultiver en serre 
froide, telles que les Abutilon, les Aralia, les Asparagus plumosus, 
les Cissus discolor, les Cyperus, les Isoleprs, le Pilea muscosa, etc., 
dont le feuillage est si différent de celui des Orchidées, et les 
Panicum panachés, les Eulalia, les Pellionia, les Selaginella, les 
Tradescantia, etc., qui forment de si élégantes bordures. 


X. CHAUFFAGE. — Pour éviter le refroidissement des serres, 
on a recours aux paillassons, à la double porte d'entrée, aux 
doubles vitrages, mais surtout à un chauffage bien établi. Le 
meilleur système de chauffage est le chauffage à eau chaude. 

La substitution des thermosiphons aux calorifères chauffant 
par des tuyaux de fumée, a rendu possible en Europe la culture 
des Orchidées exotiques. Quel que soit, en effet, le soin apporté 
à la construction des conduits, il est rare qu’ils soient suffisam- 
ment étanches pour éviter les fuites de fumée ainsi que les 
infiltrations de gaz mortels. De plus, ce mode de chauffage est 
irrégulier, incertain et peu étendu (1). 


(1) Les conduits de fumée, faits généralement en terre refractaire ou en 
poterie, ne s’échauffent que lentement et difficilement. La température d’une 
serre de dix mètres de longueur diffère de plusieurs degrés d’une extrémité à 
l’autre. 


Les calorifères à air chaud rendent l’atmosphère trop sèche. 
Le chauffage à la vapeur n’est applicable que dans de grands 
établissements (1). Le thermosiphon donne une chaleur douce, 
modérée, régulière, se répandant dans toutes les parties de la 
serre; elle peut être réglée à volonté suivant la température 
de l’air extérieur. Ce mode de chauffage est économique; il 
demande moins de combustible et nécessite peu de frais d’entre- 
tien. Le thermosiphon est si connu que nous ne croyons pas 
devoir le décrire. Divers systèmes sont en usage; tous ont leurs 
partisans et leurs adversaires : chaudières rondes, tubulaires, 
entrelacées, à conpensation, maçonnées et non maçonnées, etc. 
La meilleure chaudière est la plus simple, c’est-à-dire celle qui 
demande le moins d’entretien, qui est la plus facile à inspecter, 
qui présente le moins de complications de contours ou de sou- 
dures, et dont les grilles sont bien appropriées à la nature du 
combustible dont on se sert. Sa place naturelle est du côté opposé 
à la porte d’entrée, c’est-à-dire dans le compartiment le plus 
chaud si la serre est à deux versants et n’a qu’une entrée. 
Le foyer de la chaudière doit se trouver placé au-dessus du 
niveau des eaux les plus élevées, sinon on est exposé, en hiver, 
à voir le foyer inondé. La porte du foyer s'ouvrira toujours à 
l'extérieur, car il faut éviter que la fumée ne pénètre dans la 
serre : quand la face de la chaudière se trouve en dehors de la 
serre, l’allumage, le chargement, le départ de fumée se font 
facilement sans exposer les plantes à aucun danger. 


XI. Tuyaux. — Les tuyaux des thermosiphons se font en 
fonte, en fer étiré, en cuivre (rouge ou jaune) et en zinc. Les 
tuyaux en cuivre, beaucoup plus légers que ceux en fer et non 
moins solides, s’ils ont une 
épaisseur convenable, offrent 
de très sérieux avantages; ils 
s’échauffent plus rapidement, 
ce qui permet de réaliser une Fig. 255. — Tuyau à ailettes. 
grande économie de combustible, mais la dépense initiale est 


(1) Le chauffage à la vapeur est très convenable, mais il nécessite des 
installations dispendieuses qui sont inabordables à la plupart des horticulteurs 
et des amateurs. 


nas ir — 


plus élevée. La fonte est moins chère que le cuivre, mais elle est 
moins élégante, moins belle. Le zinc, même épais, n’est pas à 
conseiller. Les tuyaux s'applatissent et la moindre trace de cal- 
caire dans l’eau occasionne des perfora- 
tions. Par suite de la grande dilatation 
de ce métal, les soudures se rompent, 
Fig. 256. — Joint des tuyaux. des fuites se déclarent dans les coudes, 
etc., etc. Les tuyaux en fer étiré sont plus légers que ceux en 
fonte; quand on peut se procurer à bas prix des tuyaux à ailettes 
(fig. 255) on doit leur donner la préférence à raison de l’étendue 
considérable de leur surface de chauffe. Générale- 
ment les tuyaux se posent de bout à bout(fig.256), 
l'extrémité du tuyau mâle étant introduite dans 
rss le manchon du tuyau contigu muni d’un simple 
d'un tuyau gout- anneau de caoutchouc. D’autres tuyaux sont 
tère en fonte. unis d’un rebord et de collets mobiles reliés les 


uns aux autres par des boulons. Une rondelle de caoutchouc les 
rend étanches. 


Dans les serres à haute température, il est utile qu'un tuyau 
de chauffage en fonte 
ou en fer(1) traverse 
le bassin d’eau, afin 


d’activer l'évapora- 


Fig. 257bis, — Tuyau de thermosiphon plongeant dans tion de celle-ci (fig. 
une gouttière. 


253, h). L’évapora- 
tion de l’eau portée à une certaine température, permet seule la 
culture de certaines Orchidées. À Kew, on cultive avec succès 
dans une petite serre, suspendues près du vitrage au-dessus d’un 
bassin d’eau chauffée, certaines 
Orchidées délicates : Diacrium bi- 
cornutum, Dendrobium Mac Car- 


Fig. as7ter, — Gouttière mobile pour 44246, etc. On obtient le même 

thermosiphon. résultat en se servant des tuyaux 
coulés avec une gouttière supérieure (fig. 257) ou en employant 
des tuyaux plongeant dans des gouttières pleines d'eau 


(1) Le tuyau de cuivre s’oxyde rapidement et l'eau se charge d’hydrocarbu- 
rate de cuivre. 


er — 
(fig. 257%) ou en recouvrant les tuyaux de légères gouttières 
mobiles en fer (fig. 257“). 

Dans le choix du thermosiphon, il faut donner la préférence 
au système ayant le plus grand nombre de tuyaux. Comme le 
dit avec raison M. Ch. Joly (), une quantité de chaleur donnée 
par un appareil à moyenne température est plus favorable à 
la végétation que la même quantité de chaleur produite par 
des appareils surchauffés. La chaleur est plus douce, plus 
moite. Les petits tuyaux offrent une plus grande surface de 
chauffe avec un petit volume d'eau. La dimension des tuyaux 
varie de o",08 à 0,14 de diamètre(2) On les dispose à 
o®,15 du mur. Le premier contre le sol, le second près des 
tablettes. Il arrive parfois, 
par les froids rigoureux, que 
le vitrage de la serre soit une 
surface de refroidissement 
trop rapide. Afin d'éviter la 
congélation du vitrage et de 
diminuer autant que possible 
le refroidissement de l'air, on 
place un tuyau du thermosi- 


hon (fig. 258) dans l’espace Fig. 258. — Disposition de tuyaux dans 
P Le] 5 P 
une serre à haute température. 


compris entre la tablette et la 
maçonnerie. L'air échauffé au contact de ce tuyau suit la pente 
de la toiture et empêche le refroidissement de la partie vitrée. 

Quel que soit le degré de chaleur nécessaire, il faut toujours 
pouvoir régler à volonté l'entrée de l’eau chaude dans les tuyaux 
du thermosiphon. A cet effet, on munit les tuyaux, à leur entrée 
dans la serre, de soupapes ou mieux encore de robinets, de 
manière à pouvoir arrêter ou laisser entrer l’eau chaude en 
quantité plus ou moins grande. 


XII. MATÉRIAUX DE CULTURE. — La composition du milieu 
souterrain dans lequel s’établiront les racines des Orchidées 


(x) Cu. Joy. Traité pratique du chauffage, de la ventilation, de la distribution 
des eaux dans les maisons. Paris, 1878. 
(2) 0,10 est une bonne moyenne. 


= — 
doit se rapprocher autant que possible de la qualité du sol que 
ces plantes trouvent à l’état de nature dans leur habitat. Les 
Orchidées terricoles, Anguloa, Calanthe, Preptanthe, Pleione, 
Disa, Catasetum, Phajus, croissent mieux dans une terre riche 
telle qu’une terre argileuse, que dans un compost à base de 
sphagnum. 

D'autres Orchidées terricoles ou semi-épiphytes fixent, dans 
leur pays natal, leurs racines au milieu des fibres végétales, des 
radicelles enchevêtrées des Fougères, telles que le Polypodium 
vulgare, la plus cosmopolite de toutes les Fougères. On a cherché 

à donner à ces plantes les mêmes maté- 
riaux au moyen d'une terre fibreuse, 
appelée en Belgique terre de polypode 
et en Angleterre peat. Cette terre est 
. légère, résistante, élastique à la pres- 
sion; sa couleur est brun clair; elle se 
compose de fibres fines entremèêlées de 
racines plus grosses, de rhizomes de 
Polypodium et d’un peu de terre. Par 
un lavage, la terre disparaît. On enlève 
les grosses racines et les rhizomes, car 
leur décomposition amènerait l’appari- 
tion de champignons et de moisissures 
redoutables. 
Les Orchidées épiphytes, c’est-à- 
dire celles dont les racines s’attachent 


au support, comme les Acineta, les 
Fig. 259. eee galeata  Cattleya citrina, les Gongora, les Pha- 

ra] laenopsis, etc. sont cultivées sur blocs 
(fig. 65, 246, 259), ou en paniers (fig. 39, 262) : on entoure leurs 
racines de sphagnum afin de maintenir autour de celles-ci une 
humidité permanente. Il ne faut pas oublier que même les Orchi- 
dées qui paraissent être complètement épiphytes, ne le sont, 
comme l’écrivait spirituellement un bon observateur, M. Roman, 
que faute de mieux; la plupart croissent d'autant plus vigoureu- 
sement qu’elles rencontrent de la mousse ou des débris végétaux 
accumulés là où elles se sont établies, aux enfourchures des 
branches, dans les creux formés par la destruction des branches 


mortes, dans les crevasses des rochers, etc. Dans ce compost 


naturel, la plupart des Orchidées, soi-disant épiphytes, vont 
chercher leur alimentation. 


XIII. SPHAGNUM. — Le Sphagnum (Mousse des marais, 
Mousse blanche), est supérieur aux autres Mousses parfois 
employées : Hypnum cuspidatum, H. purum, Hylocomium trique- 
trum,etc. Il s’en distingue par sa croissance plus lente, son élasti- 
cité constante, son incorruptibilité, etc. Les variations d'aspect 
et de teintes que le sphagnum prend en se desséchant, font de 


Fig. 260. — Paphiopedium insigne PriTz. 


cette mousse un hygromètre naturel, un indicateur vivant et très 
sensible des besoins de la plante. Règle générale : quand le 
sphagnum devient blanc à la surface, la plante a besoin d’eau. 

Toutes les espèces de sphaignes peuvent être utilisées dans la 
culture des Orchidées, quand elles sont suffisamment serrées 
pour retenir l'humidité et suffisamment élastiques pour faciliter 
son évaporation et la circulation de l’air. On choisit de préfé- 
rence les espèces de Sphagnum (Spfhagnum cymbifolium souvent 
en mélange avec Sphagnum acutifolium et d’autres espèces voi- 
sines) à feuilles larges, serrées, imbriquées, formant de grosses 


— 526 — 


têtes, molles comme de petites éponges, — tel est l’avis du 
comte du Buysson, et il mérite toute confiance. La couleur du 
sphagnum varie, d’après l'espèce, du vert tendre au vert blan- 
châtre ou jaunâtre, quelquefois glaucescent : les têtes sont 
souvent colorées de jaune, de brun rouillé ou violacé. 

Le sphagnum doit être pur, propre, bien lavé, débarassé 
de tout parasite. On l’emploie dans son entier et à l’état 
vivant. Il se conserve ainsi longtemps et fournit aux racines un 
milieu bien sain. Le sphagnum haché, ayant quelques centi- 
mètres de longueur ne convient guère qu’en mélange. Celui qui 
a été cuit ou bouilli ne doit jamais être employé : ce n’est plus 
qu'un fumier inerte, essentiellement putrescible. Quelques jar- 
diniers tordent le sphagnum par mottes et le pressent dans le 
pot,entre les racines, de manière à bien fixer la plante, mais en le 
laissant assez élastique et assez lâche pour permettre à l'air de 
circuler autour des racines. 

Il est bon d'exposer le sphagnum, à l'air libre, pendant 
quelques jours d'hiver, par couches de 10 à 15 centimètres. Il 
en est de même de tous les composts : le froid et le grand 
air détruiront beaucoup d'insectes. Il est encore indispensable 
de laver soigneusement, minutieusement même, tous les maté- 
riaux employés, pour les débarrasser des débris putrescibles et 
des poussières fermentescibles qu’ils renferment. 


XIV. Composr. — Certaines Orchidées tropicales, semi- 
terrestres, à pseudo-bulbes, exigent un compost fortement drainé, 
formé moitié de terre fibreuse hachée (o",02) et de sphagnum 
frais : Odontoglossum, Cattleya, Laelia, Dendrobium, Arpophyllum, 
Platyclinis, Cœlogyne (Section flaccida), etc., etc. Certains genres, 
Aërides, Angraecum, Vanda, Saccolabium, Phalaenopsis, croissent 
mieux dans du sphagnum pur. On ajoute au sphagnum un peu 
de terre fibreuse pour les Bollea, Pescatorea, Warscewiczella. Les 
Spathogloths, les Pleïone, croissent dans un mélange de terre 
fibreuse, de sphagnum et de terreau argileux. Les Phajus se 
plaisent dans ce même terreau auquel on ajoute un peu de terre 
fibreuse, grossièrement concassée et du sphagnum. Les Calanthe 
demandent 2/5 de terre fibreuse, 1/5 de sphagnum auquel on ajoute 
un peu de sable grossier, blanc, pour activer le drainage. D’autres 


| 


en — 
Orchidées, les Schomburgkia, p. ex., croissent sur des rochers 
calcaires; il est évident que la présence d'un peu de calcaire 
dans la terre sera indispensable. 

Étant donnée la nature des racines de toutes les Orchidées, 
ces plantes recherchent des milieux aérés : il faut donc que le 
compost soit souple léger et par conséquent le jardinier devra 
éviter de le tasser. 

Le compost a une durée fort longue : trois, quatre ans et plus. 
Quelques rares Orchidées (Cymbidiées, Cœlogynées, Cypripé- 
dinées p. ex.) réclament un rempotage assez fréquent ; elles sont 
plus voraces. Le plus grand nombre des espèces terricoles se 
contente d’un surfaçage annuel. 


XV. Du SURFAÇAGE. — Une précaution fort bonne consiste, 
pour nous servir de l'expression consacrée, à surfacer deux ou 
trois fois par an les Orchidées cultivées en pots. Par surfacer, 
on entend remplacer par du sphagnum frais, sain et vert, le 
sphagnum ancien, jauni, qui se trouve au-dessus des racines. 
Quelques amateurs ne font cette opération que lorsque le 
sphagnum a perdu sa belle couleur verte initiale, quand il est 
devenu plus ou moins roux. Mieux vaut surfacer plus souvent, 
non point en vue de donner à l'Orchidée plus de nourriture, 
comme le croient trop souvent les vieux praticiens, mais parce 
que les matériaux usés, acidifiés, décomposés sont défavorables 
à l’Orchidée. Cette opération active la production des racines 
sans déranger celles qui existent, et donne à toutes les Orchidées, 
aux Vanda comme aux Cattleya et aux Odontoglossum, un aspect 
plus frais, plus sain, plus riant. 


XVI. MATÉRIAUX A PROSCRIRE. — On a cru pendant longtemps 
devoir mélanger au sphagnum des morceaux de charbon de 
bois (1), mais partout aujourd’hui on y renonce. Les Cattleya et 
les Odontoglossum placés dans un compost formé de sphagnum 
et de terre fibreuse (terre de Polypode), en parties égales, sont 


(1) Le comte du Buysson recommandait de choisir le charbon de bois prove- 
nant des branches du chène, formant des bâtons arrondis de la grosseur d'un 
doigt ou du double. Avant de l’employer, on le laisse tremper pendant quelques 
heures pour le débarrasser de sa poussière et bien l’humecter d’eau. 


— 528 — 


plus forts, plus vigoureux, plus sains que ceux cultivés dans le 
sphagnum et le charbon de bois. 

Certains jardiniers suivant l'avis de Loddiges avaient autrefois 
une détestable habitude. Ils mélangeaient à leurs composts de 
la sciure de bois et plantaient les Orchidées dans un mélange de 
mousse, de sciure de bois pourrie (!) et de terre de bruyère 
sableuse. Il est vrai que Loddiges a également proposé de 
mettre, dans un pot, un morceau de branche d’arbre, de le rem- 
plir avec de la mousse, de la sciure de bois et du sable, et de 
planter l'Orchidée dans ce mélange bizarre. Longtemps après 
Loddiges, d’autres ouvrages sérieux ont recommandé l’emploi du 

bois pourri. Pen- 
dant de longues 
années, on utili- 


| AY. sa la « terre de 
(ee 4 RSS saule » c'est-à- 
CZ ==AaN dire les produits 


de la décomposi- 
tion du bois for- 
N mant le cœur des 
"Ÿ vieux troncs de 
saule. Devons- 
nous faire remar- 
quer que la sciure 
de bois, la terre 
Fig. 261. — Epidendrum (Nanodes) Medusae BENTH., de saule, le bois 

cultivé en pot suspendu. pourri, etc., favo- 
risaient étrangement le développement des champignons qui 
attaquent les racines et la base des pseudo-bulbes. Cela suffit 


pour faire proscrire tous ces matériaux. 


XVII. ORCHIDÉES ÉPIPHYTES SUR BLOCS OU SUR BÜCHES. — 
Un grand nombre d’Orchidées épiphytes peuvent vivre attachées 
à un morceau de bois, à une branche d’arbre munie de son écorce 
(fig. 259). Ces matériaux leur servent d'appui, de point d’attache, 
non d’aliment. 

La nature du bois importe peu : le Bouleau blanc, l’Acacia, le 
Cornouiller, le Poirier, le Pommier, en général les bois à écorce 


no — 
rugueuse et sillonnée sont recherchés; il en est de même du 
liège. Les écorces lisses retiennent mal l’humidité : « Je n'ai 
jamais trouvé d’Orchidées, dit J. Nôtzli, sur certains Aralia à 
écorce lisse ». Certaines espèces : Zygopetalum Gautieri et rostra- 
tum, croissent parfaitement sur des troncs de fougère. Au Brésil, 
leur patrie, on ne les rencontre que sur ces plantes. A l'exception 
des Catileya citrina (fig. 246), du Gongora galeata (fig. 259), des 
Oncidium Papiho(fig. 166), O. Krameri(fig. 300), O. Limminghei, 
de quelques Epidendrum, etc., ne redoutant pas la sécheresse, 
peu d’Orchidées conservent longtemps leur vigueur cultivées sur 
bûches; encore leur faut-il dans ce cas, une serre à atmosphère 
constamment humide et des bassinages très fréquents. 

On assujetit l'Orchidée à son support au moyen de fil de 
laiton ou de cuivre rouge, de façon à maintenir l'union de 
l’Orchidée, du sphagnum et de leur support. 


XVIII. PoTs ET PANIERS. — Les Orchidées terricoles et semi- 
terrestres se cultivent dans des pots dont la base est percée de 
trous multiples. Cette culture est réclamée impérieusement 
par les genres suivants : Anguloa, Arpophyllum, Bletia, Bletilla, 
Calanthe, Cymbidium, Cyrtopodium, Disa, Limatodes, Lissochilus, 
Phajus, Pleione, Sobralia, Stenia, Thunia, Warscewiczella, Arun- 
dina et par toutes les Cypripédinées. 

Un grand nombre d'Orchidées se cultivent aussi bien en pots 
qu’en récipients à claire voie ou en paniers : Phalaenopsis, 
Aerides, Vanda, Saccolabium, Epidendrum, Rhynchostylis, Den- 
drobium (sous-section fasciculata), certains Epidendrum (E. Me- 
dusae (fig. 261) p. ex.), etc. Quand la plante doit se trouver placée 
près du vitrage, on suspend aussi facilement un pot (fig. 261) 
qu’un panier ou une buche. Certaines Orchidées (Dendrobium 
Bensoniae, D.aggregatum, Diacricum bicornutum, etc.) demandent 
fort peu d’eau. Naturellement cultivées en pots fort petits, elles 
doivent être suspendues près du vitrage dans la partie la plus 
chaude de la serre indienne. 


XIX. CULTURE EN PANIERS. — Toutes les Orchidées dont 
les racèmes floraux se dirigent vers la terre, telles que les 
Acineta (fig. 146), les Séanhopea, les Coryanthes, les Masdevallia 


0 — 
de la section chimaera, etc. seront cultivées en des paniers 
(fig. 262) dont les lattes inférieures seront assez espacées pour 
livrer passage à la tige florale; il est inutile de faire remarquer 
qu’emprisonnées dans un pot, ces racèmes ne pourraient se 
développer et pourriraient. Certaines Orchidées dont les racèmes 
courent sur le sol, tel que le Zygopetalum xanthinum (fig. 275) 
viennent mieux en paniers qu’en pots. 

Les paniers dont on se sert pour la culture des Orchidées 
sont à claire voie, et en bois(1) ; on leur donne une forme cubique 
(fig. 262) ou cylindrique (fig. 39). 

Bien que n’émettant pas de racèmes pendants, les Vanda, 
les Aerides, les Rhynchostylis, les Saccolabium et en général 
toutes les Orchidées épiphytes seront, de préférence, cultivées 
en paniers cubiques ou allongés en tube. Cette forme allongée, 
tubulaire (fig. 39), con- 
vient aux plantes qui, 
suspendues, seraient dis- 
gracieuses et tiendraient 
trop de place dans la serre. 
La forme tubulaire du 
panier permet de le placer 
sur des tablettes : cette 
forme convient surtout à 


la culture des Vanda trico- 


DRE] 
000008 lor. La culture en paniers 


Fig. 262. — Corbeille à Orchidée. présente le double avan- 


tage de laisser l’eau des arrosages s’écouler facilement, et l'air 
pénétrer plus aisément jusqu'aux racines. 

Quant au bois à employer, on a beaucoup vanté succes- 
sivement le Pitchpin, le Mélèze, le bois de Teck, le Bambou ; la 
durée de ces bois est plus ou moins limitée. L'Acacia (Robinier) 
doit leur être préféré, dit le comte du Buysson, car il est incor- 
ruptible. 


Comme matériaux destinés à garnir le panier, on choisit 


(1) Les paniers en fils de fer doivent être proscrits; ces fils se rouillent tou- 
jours, et la rouille en contact avec le tissu superficiel des racines, ne tarde 
pas à le désorganiser. 


des tessons de pots neufs, bien propres et des morceaux de fibres 
très longs qu'on dispose sur le drainage, roulés en petites boules, 
afin de favoriser la circulation de l'air. Sur ce lit, on place la terre 
ou le sphagnum, puis on assujettit les différentes substances 
autour de la plante jusqu’à ce que celles-ci atteignent la hauteur 
des derniers barreaux du panier. Cela fait, on calfeutre de 
sphagnum vivant les interstices latéraux et on surface en dôme 
le dessus du panier. Plus les espèces seront délicates, moins il 
faudra employer de compost. On ne doit rempoter les Orchidées 
cultivées en paniers qu'en cas de nécessité absolue, c'est-à-dire 
quand la plante manque d'espace, quand les racines sont pressées 
les unes contre les autres. 


XX. CULTURE EN POTS. — La forme la plus simple est la meil- 
leure : pots à forme ronde, peu profonds, à parois verticales 
pleines ou grandes terrines percées de trous tant au fond que sur 
les côtés. Celles-ci présentent toutefois de sérieux inconvénients : 
les nombreux trous latéraux servent de refuge aux cloportes, aux 
limaces, etc. : de plus ces pots sont moins solides. Aussi beau- 
coup d’orchidophiles préfèrent-ils les pots à parois pleins; ils se 
bornent à exiger que des trous multiples existent à la surface 
inférieure du pot (fig. 263'°). Quelle que soit 
la forme des vases, il ne faut employer que 
des pots propres, poreux, ayant été cuits 
gras (1). 


Dans le plus grand nombre des cas, mieux 1 l À 
vaut un pot trop petit qu’un vase de dimen- UN D) 
sion trop considérable. Les inconvénients Al ji ul 
résultant du rempotage et du bris éventuel Fig. 263. — Modèle de 
des racines sont moins à redouter que ceux DÉRREE 
qui résultent du manque d’aération des racines et de l'humidité 
surabondante du compost dans les pots trop grands. Seules les 
Orchidées à végétation robuste telles que les Sobralia, demandent 
à être empotées dans des récipients un peu grands. Il n’est pas 


(x) Ce terme indique que la poterie ne doit pas sonner trop fort, ni être 
vitrifiée (L. Duval). 


= — 
rare de voir des spécimens de culture, comme celui de M. Éd. 
Pynaert, le Sobralia macrantha nana dont nous reproduisons le 
portrait (fig. 264), portant sur des tiges feuillues 
cinquante-huit fleurs épanouies. 

En général, il convient de choisir le pot de 
manière que la projection horizontale du sommet 
des bulbes tombe sensiblement sur la circonfé- 
Does rence du récipient, de telle façon qu'en regar- 

mobile. dant le vase d’en haut, presque toutes les pointes 


paraissent arriver contre le bord sans qu'aucune le dépasse. 
On a beaucoup préconisé les pots à fond mobile (fig. 263); 


E VERMORCKEN ANVERS 


Fig. 264. — Sobralia macrantha Loz. var. nana Horr. 


leur prix est élevé et ils présentent un avantage plus théorique 
que pratique : en effet, bien souvent les racines ne garnissent 
pas seulement l'intérieur du pot, mais elles s’attachent à l’exté- 
rieur de celui-ci, le contournent en tous sens, et il devient difficile 
d'enlever la partie conique sans les briser ou les détériorer. 


XXI. REMPOTAGE. — A l'exception des Orchidées terricoles 
(Disa, Orchis, Ophrys, etc.), il faut éviter de placer la plante trop 


PL. XXIX. 


MILTONIA SPECTABILIS. 


LE | À 


profondément dans le pot; les racines manquent d’air et se 


trouvant dans un milieu trop humide, elles pourrissent infailli- 


Qu 


*“LUOH SAbwu ‘rea “Tax 115s0 #inssopSoqu0pO — *Soz 


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bulbes dont la base est 


ême des pseudo 


blement. Il en est de m 


Êe. 


, 


sans cesse mouill 


empoter trop peu profondément que 


A 
a 


Il y a moins de danger 


37 


OR DT 
de faire l’inverse. Toutefois, un rempotage fait à la surface, 
présente également des inconvénients : la végétation est moins 
vigoureuse; les racines se répandant en dehors du pot, se brisent 
facilement et il devient difficile de manipuler la plante. 

Lorsqu'il rempote des Orchidées, semi-terrestres ou des 
épiphytes, à pseudo-bulbes, le jardinier doit placer les pseudo- 
bulbes de manière à ce qu’ils se trouvent à un centimètre environ 
du dessus des bords du pot (1). Il bombe la surface du compost 
en la tassant légèrement, de façon à ce que le centre soit de 
quelques centimètres plus élevé (fig. 210) que les bords du pot 
ou de la corbeille (1). Il fixe ensuite la plante et foule convena- 
blement les matériaux. Le compost forme alors une petite butte 
(fig. 210); il présente l'apparence d’un cône s’élevant au-dessus 
des bords du pot. Si le rempotage est bien fait, si la tempéra- 
ture et les arrosages sont bien compris, le sphagnum poussera 
vigoureusement sur les paniers et sur les pots. Les plantes où il 
végètera bien, seront toujours les plus belles. 

On ne doit rempoter les Orchidées qu’en cas d’absolue néces- 
sité, c’est-à-dire quand les pousses nouvelles occupent tout 
l’espace libre du pot (Odontoglossum), quand les racines rem- 
plissent entièrement le pot, quand le compost est devenu acide 
en vieillissant, quand il a été détruit par un accident, ou enfin 
quand les racines deviennent malades. Aussi longtemps que la 
végétation est régulière, que les pseudo-bulbes sont vigoureux, 
que la floraison est normale, le jardinier se contente de surfacer 
l'Orchidée. 

Quand un rempotage est absolument nécessaire, il convient de 
n’augmenter la largeur du pot que de 0®,02 environ, c’est-à-dire 
de l’espace suffisant pour interposer une mince couche de com- 
post entre les racines qui forment le contour de la motte et les 
parois du pot nouveau. 

La manière de rempoter les plantes diffère selon leur nature : 
les Masdevallia par exemple sont placés au milieu d’un pot choisi 
un peu plus large que la plante, tandis que l'extrémité où se 
trouvent les anciens pseudo-bulbes des Odontoglossum, est 


St 


(x) Seules, les Cypripédinées seront rempotées à om,005 plus bas que la 
partie supérieure du récipient. 


AD J' 
appuyée contre le bord de manière à laisser libre la partie où les 
nouvelles pousses se produiront. 

L'époque la plus propice pour se livrer à cette délicate opéra- 
tion est le moment où la période de repos prend fin, où la végé- 
tation rentre en activité. Les racines se détachent alors plus 
aisément. Cette période est essentiellement variable. Ainsi, les 
Paphiopedium seront rempotés après leur floraison, les Sophro- 
nitis, les Masdevallia, les Cæœlogyne seront rempotés de février 
à juin; les Aerides, les Vanda et les Saccolabium en septembre 
ou en mars et avril, selon l’époque de la floraison; l’Ada auran- 
tiaca en juillet; la plupart des Oncidium, les Phalaenopsis, les 


Fig. 266. — Platyclinis glumacea BENTE. 


Cattleya à floraison hivernale (C. Bowringiana, C. labiata, 
C. marginata, etc.), les Odontoglossum grande, etc., etc., se rem- 
potent mieux à la fin de février qu’à l'entrée de l’hiver. Les 
Masdevallia à floraison estivale (M. Lindeni, M. Ephippium, 
M. Veitchi, M. Harryana, M. ignea, M. amabilis, etc.), sont 
rempotés en septembre. Ce mois est la limite extrême à laquelle 
on peut se livrer à cette opération. En automne et en hiver, il 
faut éviter de troubler les racines et par conséquent tout rempo- 
tage, sauf en cas d'accident, est interdit. 

Un amateur très éclairé, M. van Lansberghe, recommande 
quand il s’agit de rempoter des Orchidées dont les racines 
adhèrent aux parois extérieurs du pot (Catileya, Laelia, etc.), de 


— 1536 = 


plonger le pot dans de l’eau de pluie pendant un certain temps, 
une ou deux heures si le compost est humide. Après ce bain 
plus ou moins prolongé, les racines se sont ramollies au point de 
pouvoir être détachées sans grande difficulté. On détache les 
racines adhérant à l’extérieur en les séparant prudemment du 
pot avec une lame de canif. Les racines de l’intérieur lâcheront 
prise si, le pot renversé, on lui imprime quelques chocs légers 
sur un corps dur. Si elles restent adhérentes, le jardinier brisera 
le pot et fera tomber les morceaux. Il faut procéder avec grande 
prudence : les racines n’étant pas suffisamment ramollies se bri- 
sent si on les détache violemment. Cette méthode est très usitée; 
demandant beaucoup moins de temps que l’ancienne manière de 
procéder, elle présente en outre l’avantage de faire disparaître la 
vermine par suite du bain auquel on soumet la plante. De plus, 
elle facilite l'enlèvement du vieux compost en même temps qu’elle 
lave et nettoie les racines sans danger pour leur conservation. 


XXII. PROPRETÉ. — La propreté la plus absolue doit règner 
dans la serre à Orchidées. Ce n’est pas un luxe, c’est une condi- 
tion de vie pour les plantes. Dans aucune serre, la propreté ne 
peut être plus aisément maintenue que dans les serres à Orchi- 
dées où les plantes, les tablettes et les sentiers reçoivent des 
arrosements continuels. 

Toutes les poteries dont on se sert, doivent surtout être 
soigneusement entretenues. Elles seront toujours dans un état 
de propreté absolue afin de conserver la porosité nécessaire à 
la circulation de l’air. Les pots insuffisamment lavés, soumis à 
une humidité constante, se couvrent d’oscillaires, de conferves 
et d’une foule d’autres végétations nuisibles qui décomposent les 
tissus végétaux, notamment ceux des racines d’Orchidées. On 
devra enlever avec soin les mousses, les vauchéries, les moisis- 
sures qui, surtout dans les serres chaudes humides, se forment 
à la jointure des vitres et sur les parties saillantes de la serre. 


XXIII. ARROSAGES ET SERINGAGES. — Plus encore que le com- 
post, les arrosages et les seringages ont une puissante action 
sur la vie des Orchidées. L’eau et l'air fournissent aux racines et 
aux feuilles des Orchidées épiphytes à l'état naturel, la presque 


_ 


HREnS ©; ere 
totalité des matériaux d’accroissement. Arroser judicieusement 
est donc un point capital de la culture des Orchidées. 
En principe, les Orchidées en végétation devront toujours être 
humides, sans jamais être saturées d’humidité. Il faut graduer les 
arrosements d'après le développement de la plante, arroser plus 


Fig. 267. — Zygopetalum crinitum Lopp. 


abondamment celles dont les pseudobulbes atteignent leur entier 
développement que celles où ces organes ne font qu’apparaître. 

Quand les plantes sont cultivées en pots, la nature des 
matériaux doit être prise en considération. Plus ceux-ci sont 
grossiers, plus l'eau et l'air circuleront facilement, moins il 
faudra redouter un excès d'humidité. On ne se contentera donc 


pas alors de les mouiller, on les arrosera à grande eau. Quand les 
composts sont compacts, ils retiennent l’eau : les racines pour- 
rissent rapidement quand il y a excès d'humidité; dans ce cas, le 
jardinier ne peut jamais être trop prudent ni trop circonspect. 

Les matériaux servant de support aux Orchidées cultivées en 
paniers ou sur blocs seront seringués matin et soir. En été, on 
les immergera deux ou trois fois par semaine dans un baquet 
d’eau. Les plantes environnées d’air sans cesse renouvelé, se 
dessèchent plus rapidement et sont moins sujettes à la pourri- 
ture des racines que les plantes cultivées en pots. 

D'’aucuns conseillent de suspendre les arrosages régulièrement, 
tous les mois, afin de laisser le compost s’assécher; les racines 
prennent ainsi une consistance plus ferme; elles se solidifient; 
celles dont l'excès d’eau compromettait la vitalité, se rétablis- 
sent. C’est 1à un remède excellent, mais mieux vaut ne pas avoir 
besoin d’y recourir, et tel sera le cas si les arrosements sont 
judicieusement faits. 

Les arrosages doivent être diminués un peu à l’époque de la 
floraison, beaucoup à celle du repos. Dans certains cas, ils 
doivent même être complètement interrompus pendant toute la 
période de repos. 

On ne doit seringuer les Orchidées de serre tempérée et de 
serre chaude qu'avec la plus extrême prudence, et seulement 
lorsque l’eau peut immédiatement s'évaporer par suite de l’éléva- 
tion de la température de la serre. Il est préférable de saturer 
d'humidité l’atmosphère de la serre en répandant de l’eau en 
abondance sur les tablettes entre les plantes ainsi que dans les 
sentiers. Il est dangereux de seringuer les Orchidées quand elles 
sont échauffées par le soleil, car les gouttes d'eau qui demeurent 
attachées à la plante, décomposent rapidement les tissus sur 
lesquels elles se trouvent. 

Les Orchidées colombiennes ou de serre froide se trouvent 
toutefois bien de recevoir un bassinage abondant de mai à sep- 
tembre, le soir après le coucher du soleil, quand les feuilles ne 
sont plus échauffées par ses rayons. 

Au moment de la pousse des jeunes feuilles, surtout quand il 
s'agit d'espèces à feuilles épaisses et charnues, les jeunes tissus 
se tachent vite : une tache jaune huileuse apparaît d’abord à la 


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nervure centrale de la feuille; elle s’étend et atteignant la pousse 
nouvelle, la fait périr. On peut parfois empêcher cette tache de 
s'étendre en faisant une légère incision dans le parenchyme au 
milieu de la tache, et dans le sens de sa longueur. 

Quand on redoute de voir l’eau des seringages séjourner à l’in- 
térieur des plis d’une feuille, il faut renverser la plante afin 
d’enlever toute l'humidité surabondante. 

Pour les arrosements on se servira de préférence d’arrosoirs 


à petite pomme (o",025 à o®",03 de diamètre) percée de 8 à 
10 trous et répandant l’eau d’une manière très uniforme. L’arro- 
soir à bec expose le jardinier à creuser la butte du compost et à 
faire sauter autour de la plante des fragments de terre ou de 
sphagnum — ce qui est malpropre. 


XXIV. Eau. — La meilleure eau pour l’arrosage des Orchidées 
est l’eau de pluie la plus propre possible (1) et, à son défaut, l’eau 


(1) Le jardinier donnera toujours la préférence aux eaux pluviales, à condi- 
tion qu’elles n’aient point été recueillies sur des toits métalliques (cuivre ou 
zinc) ou couverts de suie. Ces eaux sont exemptes de calcaire. A leur 
défaut, les eaux des rivières et des ruisseaux peuvent être utilisées. Les eaux 
de puits presque toujours très chargées de calcaire et plus froides doivent être 
évitées. On s’en sert en cas de besoin, et encore faut-il les laisser exposées à 
l'air pendant assez longtemps. 


— 540 — 


de rivière. Elle doit être très propre, car si elle contenait déjà 
dans les bassins ou dans les citernes des germes d’algues vertes, 
ceux-ci auraient tôt fait d’envahir les pots, le compost, les 
racines et les plantes. Pour maintenir dans les réservoirs l'eau 
propre, on y place quelques tanches ou des cyprins, poissons fort 
avides des conferves. Mieux vaut couvrir les citernes tout en les 
aérant : à l'obscurité ces végétations ne se développent pas. 

Toute serre à Orchidées bien construite renferme, sous les 
tablettes, un bassin (fig. 250, j, h, 1,) spécialement destiné à 
recevoir les eaux de pluie nécessaires à l'arrosage quotidien. 
Les gouttières, situées sur les côtés extérieurs des serres, ne 
doivent pas l’alimenter directement, car, en hiver, les eaux froides 
abaisseraient considérablement la température de la serre. 

Quand on doit se servir d'eaux de puits ou de fontaine, 
il faut les débarrasser du calcaire qu’elles renferment (1), celui-ci 
produisant sur les plantes des plaques ou des taches blanches 
qui sont de véritables incrustations. 

En temps ordinaire, les eaux de ville, de puits, de rivière ou 
de source ne sont employées que pour rafraïchir la serre et en 
augmenter l’hygrométrie. 


XXV. ENGRAIS. — Faut-il donner des engrais aux Orchidées ? 
La question a souvent été débattue. En règle générale, les 
Orchidées ne réclament pas d'engrais. On connaît l’histoire des 
Dodos, ces pigeons sans ailes des îles Mascareignes : la civili- 
sation les a fait disparaître de la terre. Les Orchis, les Ophrys 
disparaissent de même devant les progrès d'une culture inten- 
sive; l’engrais les tue. 

Certaines Orchidées terricoles, les Anguloa, les Calanthe, la 
plupart des Paphiopedium, les Lycaste, les Miltonia (2), les 


(1) Pour précipiter le calcaire, il suffit de verser dans le réservoir dix-huit 
à vingt grammes d'ammoniaque du commerce (non empyreumatique) par 
hectolitre d’eau. En agitant, l’eau devient laiteuse, puis s’éclaircit. Il reste 
dans l’eau ainsi traitée un peu de carbonate d’ammoniaque, accidentellement 
même un peu d’'ammoniaque, substances qui sont loin d’être nuisibles. 

(2) M. A. Dallière recommande d’arroser les Miltonia Roezlii et M. vexillaria 
avec un engrais liquide:5litres purin ou bouse de vache et deux litres de gadoue 
ou engrais flamand dilués dans 30 litres d’eau; le mélange est mis dans une 
cuvelle en bois et y séjourne de trois à quatre semaines avant qu'on en fasse 


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Sobralia, etc., se trouvent bien de recevoir quelques arrosements 
d'eau mélangée de guano, de bouse de vache(1). On ne peut 
donner d’engrais que pendant la période où la végétation est la 
plus active. Des essais faites avec le guano sur des Paphiopedium 
barbatum ont été fort concluants. 

Quant aux Orchidées épiphytes, leurs racines n’absorbent 
guère de sels minéraux; elles croissent dans le sphagnum, dans 
des mousses humides, dans des débris végétaux en décomposition. 

L’ammoniaque, combinaison d’azote et d'hydrogène, est, dit-on, 
pour l'Orchidée un précieux aliment. Les sels ammoniacaux 
agissent-ils directement? Ne sont-ils 
pas plutôt transformés en azotates sous 
l’action des microbes oxydants du sol? 
L'ammoniaqueest contenu en très petite 
quantité dans l'eau et dans l’air. Ses 
proportions s’accroissent notablement 
avec l'altitude; les plantes alpines, 
les Orchidées des montagnes se trou- 
vent bien, dit-on, d’être placées dans 
le voisinage de quelques cristaux de 
carbonate d'ammoniaque s’évaporant 


lentement à l'air. Fig. 260. — Houlletia Brockle- 
Nous avons parlé à diverses reprises hurstiana Lo. 


de l’influence du voisinage de la mer sur la vigueur de certaines 
Orchidées. Les brouillards salins ont une influence certaine sur 
la croissance de ces plantes. On a essayé dans les serres d'imiter 
ces conditions particulières en mettant du sel à proximité des 
tuyaux de chauffage. Quelques auteurs recommandent de serin- 
guer les plantes une ou deux fois la semaine avec une solution 
de guano ou de carbonate d’ammoniaque (un décigramme par 
litre d'eau). 

Les jardiniers ne doivent pas, dans l'emploi des engrais, se 
borner à faire des expériences momentanées. Souvent, à la 


usage. Lors de l'emploi, le mélange est bien remué; immédiatement après 
avoir été arrosée, la plante est légèrement bassinée à lapomme ou à la seringue. 

(1) D’après M. Roman, l’emploi du phosphore et de la potasse favorise au 
plus haut degré la production des bourgeons, tant foliacés que floraux, sur 
toutes les Orchidées (?). 


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vérité, ils obtiendront des végétations exceptionnelles grâce à 
l'engrais, mais elles ne seront obtenues qu’aux dépens de la 
végétation ultérieure. C’est un effort de vitalité qu’on sollicite 
de la plante; elle s’y soumet, mais elle en meurt. « Les nom- 
breux essais que j’ai faits m'ont convaincu, m'écrivait M. Lubbers, 
que, pour les épiphytes, les engrais sont wwisibles. Il en est qui, 
certainement, donnent à la végétation une vigueur inusitée, mais 
les plantes ainsi traitées sont atteintes de pléthore. Leurs tissus 
sont gonflés de liquides et une pourriture 2nterne ne tarde pas 
à se manifester. 

« Je citerai comme exemples des Cuttleya, des Laelia qui, après 
avoir poussé très vigoureusement, sont #orts en fort peu de 
temps. » 


XXVI. DRAINAGE. — Toutes les Orchidées et principalement 
celles appartenant aux genres Sobralia, Avyundina, Calanthe, 
Preptanthe, Chysis, Masdevallia, Aerides, Vanda, ont besoin d’un 
drainage énergique, tant pour faciliter l’écoulement rapide de 
l’eau que pour assurer l’aérage complet des racines. On choisit à 
cette fin des tessons de poterie neuve, dont on remplit parfois les 
deux tiers du récipient, mais en général on peut se borner à 
remplir de tessons le tiers du pot ou du panier. Au-dessus de 
ces tessons, on dispose une couche de sphagnum, afin d'obvier 
soit à l’obstruction du drainage par le compost, soit à un écou- 
lement trop rapide de l’eau. 

Les tessons ayant déjà servi à la culture doivent être 
rejetés, car ils renferment toujours des Mucédinées qui trouvent 
dans l’humidité du sphagnum un terrain de culture merveilleux, 
et produisent rapidement un ensemble de végétation cryptoga- 
mique très nuisible aux racines. 


XXVII. LAVAGE DES FEUILLES. — Le lavage des feuilles est 
indispensable. On les lavera fréquemment, une fois au moins tous 
les mois. Il ne faut pas oublier que l’alimentation des Orchidées 
puisée dans le milieu aérien égale et souvent dépasse l’alimenta- 
tion souterraine par les racines. Il importe donc que rien ne 
vienne entraver les fonctions des feuilles. Plus celles-ci seront 
propres, plus actif sera leur travail de transpiration et d’assi- 
milation. 


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XXVIIT. TUTEURAGE. — Quelques rares Orchidées, telles que 
les Arfophyllum, les Sobralia et les Vanda, doivent être tuteurées. 


Pour les autres genres, le tuteurage doit être abandonné, car 
il produit toujours un effet déplorable. Quand on doit y recourir 


Fig. 270. — Paphiopedilum callosum Prirz. 


tt 

pour soutenir certaines hampes florales, il faut choisir des tuteurs 
presque invisibles. Les liens de Raphia pourrissent en très peu de 
temps dans les serres à Orchidées; on leur préfère ceux formés des 
fibres de nattes de Russie fabriquées au moyen d’écorce de tilleul. 


XXIX. MALADIES. — La cause la plus fréquente des mala- 
dies des Orchidées est une humidité trop forte ou intempes- 
tive, déterminant la pourriture des racines et des pseudo-bulbes, 
Il y a vingt ans, le comte du Buysson indiquait le seul remède 
efficace : Enlever la plante de son récipient, secouer les vieux 
matériaux, laver la plante à grande eau, et après l’avoir laissée 
s’égoutter et sécher, couper à vif toutes les parties gâtées des 
racines, des feuilles, des pseudo-bulbes; couvrir de plâtre ou de 
poussière de charbon de bois Les plaies résultant de l’ablation des 
parties contaminées; enfin replacer la plante dans des matériaux 
neufs et frais, et la soumettre jusqu’à la reprise au traitement 
des plantes importées. 

Quand les pseudo-bulbes atteints par la moisissure deviennent 
jaunâtres ou livides, quand pressés entre les doigts, leurs tissus 
devenus lâches laissent suinter l'humidité, il faut les couper, mais 
sans troubler la plante si les autres parties sont saines. Quand le 
rhizome est mou et quand il laisse exsuder une eau jaunâtre et 
souvent fétide, la plante est perdue et l’ablation du rhizome ne 
suffit pas à sauver les pseudo-bulbes. 


XXX. SocIABILITÉ DES ORCHIDÉES. — Les Orchidées, même 
les espèces terricoles, ont un tempérament peu égoïste; elles 
vivent en bonnes camarades avec nombre d’autres plantes. Nulle 
part, on ne les voit plus saines, plus vigoureuses, que là où le 
sphagnum dans lequel elles croissent est bien vert, bien vivant. 
Certaines associations ne leur déplaisent même pas. Au Jardin 
botanique de Bruxelles, M. Lubbers a obtenu les meilleurs résul- 
tats en cultivant des Sonerila, des Bertolonia et même certaines 
Fougères naines ou rampantes, dans les pots de certaines Orchi- 
dées et particulièrement des Vanda. Ces plantes profitent de 
l'humidité surabondante du sphagnum et vivent, dans la plus 
parfaite harmonie, avec les Orchidées dont leur gracieux feuil- 
lage coloré orne et garnit la base. 


CHAPITRE IV. 


ORCHIDÉES IMPORTÉES. 


I. TRAITEMENT DES ORCHIDÉES IMPORTÉES. — Certains soins 
spéciaux sont nécessaires aux plantes nouvellement importées 
alors même qu'elles ont été récoltées par un voyageur intelli- 
gent, emballées avec un soin judicieux, et que, bien classées et 
bien étiquetées, elles sont parvenues en bon état. 

Parfois un envoi comprend de nombreuses plantes : une seule 
arrive vivante, elle fleurit et meurt. Pendant des années les 
amateurs se désolent au souvenir de la plante entrevue, jusqu’au 
moment où, réintroduite à nouveau, la belle Orchidée vient 
reprendre son rang dans les serres. Telle est l’histoire de 
l’Aerides mitratum. E. C. Parish le découvre en 1864 au Moul- 
mein : il en envoie quelques plantes à M. Low; une seule survit: 
elle fleurit en avril 1868 dans la collection de M. J. Day à 
Tottenham; elle est dénommée par Reichenbach, puis elle 
meurt. L'espèce était perdue quand Füôrsterman expédia en 1886 
de nouveaux pieds à MM. Sander et Shuttleworth. 

Les difficultés de l'importation des plantes vivantes sont 
parfois accrues par suite des conditions spéciales dans lesquelles 
elles croissent. Tel est le cas de l’Odontoglossum blandum, 
admirable Orchidée naine, aux pseudo-bulbes de la taille d’une 
noisette, croissant à une altitude de 1,800 à 2,200 mètres, dans 
une ramification de la Cordillière orientale de la Nouvelle- 
Grenade, la montagne de Cameron. Là elle vit sur des Mélasto- 


Fra 


macées couvertes de mousses. Ces bulbes résistent difficilement 
aux sécheresses du voyage; grâce à un emballage soigné et à des 
soins attentifs, M. Kalbreyer réussit pourtant, en 1879, à amener, 
à Londres, un petit stock de ces plantes. 

Quelles que soient les précautions prises lors de l’expédition, 
les plantes n’ont point subi impunément l’emprisonnement cel- 
lulaire auquel elles ont été condamnées pendant des semaines 
et des mois. Il faudra donc s’armer de patience afin de rendre 
aux tissus ce que leur a enlevé la dessiccation, suite inévitable 
d’un long voyage en caisse close. Tantôt les pseudo-bulbes 
seront desséchés; tantôt un bourgeon se sera développé, frêle, 
étiolé, vivant des réserves nutritives que contenait le pseudo- 
bulbe, réserves qu'aucune assimilation externe ne vient rem- 
placer. Dans les deux cas, il faut, dès son arrivée, plonger la 
plante dans de l’eau douce ayant la température ordinaire de la 
serre, et laver soigneusement la nouvelle venue avec un gros 
pinceau ou une éponge fine. 

En faisant cette première et indispensable toilette, comme à 
chaque rempotage ultérieur, l’orchidophile coupe au sécateur 
touteS les parties avariées, cariées, mortes ou inutiles, mais 
respecte soigneusement toute partie de la plante donnant signe 
de vie(1). La plante nettoyée, on couvre les plaies de plâtre, de 
poussière de charbon de bois ou de tout autre substance absorbant 
l'humidité. Puis on place la plante importée, droite, debout 
sur un lit de sphagnum humide dans une serre à température 
modérée, à l’abri des rayons du soleil et des courants d’air(2). On 
bassine légèrement tous les jours les plantes importées, afin de 
forcer les pousses à engraisser, pour me servir de l’expression pit- 
toresque des horticulteurs anglais. Les Orchidées demandent à ce 


(1) Quand les feuilles ont résisté au voyage, surtout lorsqu'il s’agit d'Orchi- 
dées à feuilles épaisses : Cattleya, Laelia, etc., on cherche à maintenir en vie 
ces feuilles en leur donnant le plus d'humidité possible et en les préservant 
de la lumière, les premiers jours tout au moins qui suivent l’arrivée des 
plantes dans la serre. 

(2) Quelques jardiniers placent les plantes nouvellement introduites sous les 
tablettes des serres; d’autres les tiennent fort humides. Ce sont là des procédés 
condamnés par l'expérience. Il importe surtout d'obtenir d’abord des racines; 
il faut que celles-ci apparaissent avant les jeunes pousses, sinon ces dernières 
seraient faibles et maladives. 


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moment des températures différentes: ainsi les Odontoglossum 


Fig. 271. — Paphiopedium X Measuresianum HorT, 


(O. crispum, O. grande, etc.) réclament dans la serre une place 


te 
plus fraîche que les Catileya et les Dendrobium. Bientôt, souvent 
dans la première quinzaine, apparaissent les premiers symptômes 
de vie active : à ce moment on recouvre les racines d’une légère 
couverture de sphagnum et, dès que les nouvelles racines appa- 
raissent, on peut mettre les plantes en pots ou en paniers. 

La plupart des Orchidées n'ayant pas de pseudo-bulbes, telles 
que les Paphiopedium et les autres Cypripédinées, peuvent être 
mises en pots dès leur arrivée. Ces plantes croissent ainsi beau- 
coup mieux que si elles ont été couchées sur des gradins jusqu'à 
leur reprise ou suspendues la tête en bas, comme le font certains | 
vieux praticiens, car l’eau dont elles ont grand besoin, peut 
ainsi leur être fournie plus commodément. 


II. ÉPOQUE DES IMPORTATIONS. — Le moment le plus favorable 
pour récolter les Orchidées est celui qui suit immédiatement la 
floraison. C’est la saison du repos pour la plupart des Orchidées. 
On comprend que si l'Orchidée est mise en caisse à ce moment, 
si elle est tenue très sèche, les bourgeons ne se développeront 
guère durant le voyage et la plante arrivera dans un état meilleur 
que si des bourgeons débiles s'étaient développés durant le long 
voyage dans une caisse sans air et sans lumière. 

Les importations qui parviennent au printemps en Europe 
sont toujours celles qui reprennent le mieux, car elles ont toute 
la période estivale pour se refaire. Celles faites en automne ou 
en hiver offrent moins de chances de réussite. 

En règle générale, quelle que soit l'époque de l’année où la 
plante importée est en voie de s’établir, il faut assurer la prompte 
reprise en favorisant le développement de la pousse et ne lui 
donner sa période de repos que la croissance de celle-ci terminée. 


III. DES SOINS A APPORTER A LA RÉCOLTE DES ORCHIDÉES. — 
Nos Orchidées indigènes et à plus forte raison les Orchidées 
terricoles exotiques, périssent souvent parce qu’on néglige, 
lorsqu'on les rencontre dans leurs stations naturelles, de prendre 
les soins nécessaires à leur transplantation. 

Pendant la floraison des Orchidées terricoles ou très peu après 
celle-ci, il importe de relever les plantes avec leurs mottes et de 
placer ces dernières dans du sable légèrement humide, dans 


PL. XXX. 


ea 
un endroit bien abrité contre la pluie, frais et ombragé. La 
floraison terminée, cesser tout arrosage et laisser sécher entière- 
ment. Vers la fin du mois d'août, nos espèces indigènes sont en 
plein repos. Les plantes peuvent alors être envoyées à grande 
distance, emballées comme des oignons. — Il faut avoir soin de 
les planter profondément. — La plupart des Orchidées à pseudo- 
bulbes souterrains que l’on transplante pendant l’époque de leur 
floraison, périssent ou périclitent. Quand parfois le jardinier ou 
le botaniste négligent la partie principale de la plante, le bulbe 
de l’année, contenant le germe du végétal futur, la transplan- 
tation et l’importation sont inutiles! 

Le moment de la transplantation doit être retardé jusqu’à ce 
que le bulbe soit suffisamment mûr pour se détacher facile- 
ment du reste de la plante. Aussi ne doit-on arracher les Orchi- 
dées qu'après leur floraison et lorsqu'elles ont accompli leur cycle 
de végétation. 

Les Orchidées exotiques, presque toutes épiphytes, sont récol- 
tées plus facilement. Il sufñit de les détacher avec le plus grand 
nombre de racines possible. Les difficultés commencent quand 
il s’agit de les expédier. Souvent le collecteur ne pourra pas 
immédiatement les mettre en caisse; il devra les soigner pen- 
dant quelques semaines; ce sont là des difficultés sérieuses au 
cours d'un voyage à la découverte. Les plantes étant arrivées 
à la station d'expédition, on les mettra dans des caisses à la 
Ward ou bien, se servant de grandes caisses de bois, on les 
placera par lits superposés, les plantes étant isolées les unes 
des autres, entourées de copeaux de bois sec ou bien attachées 
sur des toiles métalliques fixées aux parois de la caisse. Des 
trous recouverts de toile métallique ou de zinc perforé seront 
percés dans ces parois de manière à assurer le renouvellement 
de l’air, sans permettre aux souris et aux rats, ces rongeurs si 
friands des pseudo-bulbes, de venir s'installer dans le précieux 
colis. On veillera à ce que, à bord du navire, la caisse, placée 
dans un réduit frais, soit à l’abri des paquets de mer et, en 
général, de toute infiltration d’eau. 


IV. PLANTES ÉTABLIES. — L'amateur, désireux de se livrer à la 
culture des Orchidées, peut ou bien acquérir des plantes déjà 
38 


établies ou bien garnir ses serres de plantes introduites. Dans le 
premier cas, il n’a qu'à s’adresser à des maisons sérieuses : il 
obtiendra facilement des plantes saines, bien nommées, dont la 
culture ne lui donnera guère de mécomptes. 

Mises en pots, ou comme on dit en langage jardinique, bien 
établies, les plantes ne nécessiteront aucun travail la première 


Fig. 272. — Paphiopedium X Marshallianum Rous. f. 


année. Au prix auquel se vendent actuellement les bonnes variétés 
ordinaires d'Orchidées, un amateur disposant d'un budget même 
restreint peut facilement se procurer une petite collection (1) qui 


(1) Voici une liste de quelques espèces d’Orchidées intéressantes et faciles 
à cultiver : Anguloa Clowest*, Ruckeri*, Calanthe Regnieri, Cattleya labiata 
Mendelii, C. 1. Mossiae, les Cypripèdes : Paphiopedium barbatum, P. callosum, 
P. Harrisianum, P. Hookerae, P. insigne, P. Lawrenceanum, — Dendrobium 
nobile, D. thyrsiflorum, D. Wardianum, Epidendrum vitellinum*, Laelia 
ancepst, L. purpuratat, L. majalis*, Masdevallia tovarensis*, M. Harryana, 
M. Lindeni*, Odontoglossum crispum (Alexandrae)f, Od. grande*, Od. hastila- 


ss — 
lui permettra d’essayer cette culture avec succès. Quand il 
connaîtra cette culture et ses exigences, si ses ressources le lui 
permettent, il achètera des spécimens plus forts. L'amateur qui 
fait ses premiers essais avec des plantes établies, ne doit pas se 
borner à cultiver une seule espèce; il trouvera plus de plaisir à 
suivre plusieurs espèces, et il aurait tort de se limiter toujours à 
la culture d'un seul spécimen de chaque plante. Tout amateur 
devrait, à ses débuts, commencer à cultiver des Orchidées faciles 
et de floraison abondante, comme l’Odontoglossum crispum. 


IV. VALEUR DES IMPORTATIONS. — Quelques amateurs donnent 
la préférence aux plantes nouvellement importées. Leur florai- 
son se fait attendre plus longtemps, mais l’espérance de voir 
de nouvelles variétés exerce une séduction toute naturelle. Le 
cœur humain est anxieux d’espérances et nulle joie n’égale, pour 
l'amateur, celle de voir éclore une fleur inconnue ou rarissime. 
Cette séduction est d’autant plus vive qu’il peut aujourd’hui se 
procurer des Orchidées importées à fort bon compte s’il calcule 
la valeur des espèces ou des variétés d’après l’éloignement du 
pays d’origine et les soins donnés à la plante importée. 

Les conditions dans lesquelles les plantes voyagent, exercent 
une grande influence sur leur valeur. Les plantes ayant des 
feuilles vertes, relativement fraîches, et des pseudo-bulbes très 
forts, ont évidemment une valeur beaucoup plus grande que 
celles ayant perdu une partie de leur feuillage et ne possédant 
que des pseudo-bulbes fanés et épuisés. Ces dernières ont été le 
plus souvent introduites à une époque de l’année où elles ont 
eu à souffrir de la gelée. Certains établissements d'importation, 
dans l’espoir de vendre plus vite et mieux leurs plantes récem- 
ment introduites, soumettent celles-ci, dès leur arrivée, à un 
traitement spécial qui active et développe leur végétation. Il 
faut y prendre garde; car, la plante meurt épuisée après ce pre- 
mier effort. 


Est-il besoin de dire que l’amateur doit tenir compte de 


bium*, Od. nebulosum*, Od. Rossi majus*, Oncidium incurvum*, On. ornitho- 
rhynchum*, Stanhopea tigrina*, Sophronitis grandifiora*. 

Les espèces marquées * conviennent à la serre froide 7-10° C; celles mar- 
qués + à la serre tempérée 10-142 C; les autres à la serre chaude 15 à 180. 


toutes ces circonstances dans l’achat des Orchidées, pour ne 
pas acheter chat en poche? S'il est prudent, il commencera sa 
collection par l’achat de bonnes plantes établies. 


V. CULTURE DANS LES PAYS TROPICAUX. — Si la culture des 
Orchidées tropicales est difficile dans nos serres, celle des 
Orchidées montagnardes est plus délicate encore sous les tro- 
piques. Dans le delta de l’Amazone, au Para, région où règne un 
été perpétuel et une humidité constante, les Orchidées brési- 
liennes originaires des Montagnes des Orgues et celles qui pro- 
viennent de la Chaîne des Andes, telles que les Odontoglossum 
et certains Oncidium, fleurissent difficilement. Les Cypripédinées 
des régions froides (Cypripedium Calceolus) ou tempérées (Paphio- 
pedium insigne) sont réfractaires, semble-t-il, à toute culture (1). 
D'autres Orchidées y développent par contre dans toute leur 
beauté leurs floraisons admirables! Au jardin botanique de 
Demerara (Guyane anglaise), plusieurs longues allées sont 
plantées de Crescentia sur les branches desquels croissent éta- 
gées les plus belles Orchidées tropicales. 

Les Orchidées des climats tempérés et des altitudes élevées 
ne peuvent vivre dans ces contrées inondées de soleil et de 
lumière. Les Orchidées résistent mieux au froid qu’à la chaleur. 
Sous les tropiques, comme dans les serres à température trop 
élevée, la plante constamment surexcitée croît, se développe 
sans cesse, et, privée de la période de repos qui lui est néces- 
saire, ne pouvant suffire à cette croissance continue, elle s'épuise 


et meurt. 


(1) Cf. S. JENNINGS. Orchids and how to grow them in India and other tropical 
climates, 1875. 


CESPTERE V, 


DU REPOS CHEZ LES ORCHIDÉES. 


I. PÉRIODE DE REPOS. — En général, les végétaux traversent 
chaque année une période de repos, soit que la température 
s'abaisse suffisamment pour suspendre toute végétation et pro- 
duise le repos hivernal ou sommeil d’hiver, soit au contraire 
que la température s'élève amenant avec elle la sécheresse et le 
repos estival. La première cause prédomine dans les climats 
tempérés dont la chaleur maximum trop faible pour arrêter la 
végétation, surexcite la vie chaque fois que l’humidité est 
suffisante. La seconde cause se manifeste dans les contrées 
tropicales où la plus forte chaleur est accompagnée d’une séche- 
resse intense. Chacune de ces causes de repos agit sur la vie de 
certaines Orchidées. De là cette double conséquence : 

1° Le repos des Orchidées des contrées tempérées se produit 
par le ralentissement progressif de la végétation, coïncidant 
avec une température moins élevée, une radiation solaire moins 
intense et une humidité exagérée contre laquelle la plante se 
protège de son mieux en s'enfouissant dans le sol. 

2° La surélévation de la température et une sécheresse intense 
arrêtent la végétation de la plupart des Orchidées asiatiques, 
africaines, américaines ou océaniennes: Dendrobium, Anguloa, 
Angraecum, Catasetum, Caïtleya, Cycnoches, Laelia, Lycaste, 
Pleione, Schomburgkia, etc. 

Dans leur pays natal, des mois de chaleur et de sécheresse 
excessives succèdent à une période de pluie. Par suite de 


Re 
l'aridité du sol et de l’air, la végétation est suspendue; la plante 
subit alors une période de repos, équivalant à nos hivers, quoique 
de moindre durée. Cette période coïncide avec la fin soit de la 
floraison, soit de la végétation active de la plante. 


II. DURÉE ET ÉPOQUE DU REPOS. — À l'exception de quelques 
genres n’ayant pas de repos marqué : Ada, Cirrhopetalum, Cochlioda, 
Lycaste, Paphiopedium, Zygopetalum, Masdevallia, Odontoglossum, 
etc., toutes les Orchidées se trouvent 
bien d’être tenues à l’état presque sec 
pendant une période variant de trois 
semaines à cinq mois. La rigueur, la 
durée et l’époque du repos sont physio- 
logiquement déterminés par les réser- 
ves emmagasinées dans les feuilles et 
dans les pseudo-bulbes. 

La conduite des plantes pendant la 
période de repos, réclame toute l'atten- 
tion de l’orchidophile. Elles sont rares, 
les Orchidées qui, comme les Anguloa, 
les PBatemania, les Bifrenaria, les 
Bletia, etc., perdent leurs feuilles et 
supportent un repos très accentué de 
novembre à mars, ou qui, comme les 
Pleione et les Calanthe, peuvent passer 
la saison du repos annuel dans un état 
de sécheresse absolue, à tel point qu’on 


= = 


ne 273. — Zygopetalum ; 
L Mactaÿs Elod. peut les retirer de leur pot et les 


conserver dans un endroit sec. La plupart des Orchidées ne 
cessent pas de vivre pendant leur période de repos ; celui-ci 
n’est que relatif, une sorte de vie plus lente. Certaines Orchidées 
demandent un repos modéré : Barkeria, Brassavola, Brassia, 
Chysis,etc.; d’autres,un repos plus sévère. Sielles ne s’accroissent 
plus d’une manière visible, il se fait néanmoins en elles un travail 
constant d'élaboration et d’assimilation : aussi faut-il les sur- 
veiller attentivement, de manière à ce que ce travail ne soit jamais 
complètement arrêté. 

Pour beaucoup d'Orchidées, il suffit, à l’époque du repos, de 


sait + | cs 

maintenir autour de la plante j’humidité strictement nécessaire 
afin d'empêcher le sphagnum de mourir et les feuilles de se rider 
à l'excès. Si celles-ci se fanent, si les bulbes se rident, il faut 
donner de l'eau; mais les arrosages doivent être réduits au 
minimum. S'ils sont faits hors de propos, la végétation repart 
avant la fin de la période du repos; la plante émet des pousses 
malingres, chétives, rabougries et meurt victime de cette crois- 
sance prématurée. 

Dans nos serres, nous pouvons régler dans une certaine me- 
sure, la période du repos (1). L'orchidophile choisit de préférence 
la saison où les journées sont courtes et le soleil moins chaud. 
Les températures élevées dues à l’irradiation solaire fortifient la 
plante, tandis que celles provenant de la chaleur artificielle la 
débilitent toujours plus ou moins. C’est le motif pour lequel 
l’orchidophile fait d'ordinaire diminuer les arrosements à partir 
d'octobre et de novembre, jusqu’au mois de février ou mars. 

Aucune date fixe, uniforme, ne peut être assignée au moment 
du repos de toutes les Orchidées ; chaque plante se charge d’in- 
diquer celle qui lui convient. Chez de nombreuses Orchidées, 
peu de temps après le développement du pseudo-bulbe, la hampe 
florale apparaît, soit à la base (Odontoglossum), soit au sommet 
du bulbe (Cattleya). Les boutons formés, la croissance des feuilles 
se ralentit et s'arrête. Parfois, la floraison a lieu, et celle-ci 
terminée, la plante s'engourdit, la vie semble arrêtée; c’est le 
moment du repos (Ada, Rodriguezia, Lycaste, Oncidium, quelques 
Vanda, certains Odontoglossum). Chez d’autres Orchidées, le 
développement s'arrête après la formation du pseudo-bulbe 
(Anguloa Clowesit p. ex.) : le moment du repos est celui qui 
sépare cette formation de la production du bourgeon racémique 
accompagnant celle des nouveaux pseudo-bulbes. 

Un même genre peut présenter de grandes divergences quant 
au moment et à la durée de sa période de repos. La plupart des 


(1) Un orchidophile très expert, M. L. Duval, de Versailles, conseille à 
l'amateur ne possédant que quelques plantes, de se servir d'étiquettes portant 
ces mots imprimés : « Au repos. » Placée sur une plante, cette étiquette avertit 
la personne chargée du soin des Orchidées : « Ne mouillez pas. » lui dit-elle; 
« cette plante se repose ». 


Odontoglossum (1) sont constamment en végétation; quelques-uns 
demandent un simple ralentissement de leur végétation sitôt 
après la floraison; d’autres, Od. citrosmum, réclament un repos 
sévère, pendant les mois de septembre à mars; l’Od. Schlieperia- 
num demande un repos marqué, mais moins sévère, à partir 
du mois d’octobre jusqu’en mai, moment où apparaissent ses 
racines et ses nouvelles pousses. 

Les Catileya nous présentent des différences plus considérables 
encore, en ce sens que certaines espèces à longs pseudo-bulbes 
(C. guttata (fig. 190), C. Harrisoniae, C. Loddigesii, etc.) ont deux 
époques de végétation (2), l’une de mars à mai, l’autre de juillet 
à octobre. Chacune d’elles se termine par l’apparition de 
racèmes en grappes, après quoi vient une période de repos de 
six semaines à deux mois. Les autres Cattleya et notamment 
tout le groupe des C. labiata (fig. 120), n'ont qu’une époque de 
végétation et leurs fleurs précèdent la période de repos. Parmi 
les Laelia nous rencontrons les mêmes dissemblances : tandis 
qu’un grand nombre d’espèces (L. anceps (fig. 249), autumnalis 
(fig. 195), pumila, etc.) fleurissent au moment où leur repos com- 
mence, il en est d’autres (L. purpurata (fig. 250), L. tenebrosa) qui 


fleurissent en mai, à la fin de la période du repos modéré mais 
très long qu'elles subissent. 


III. TRAITEMENT PENDANT LA PÉRIODE DE REPOS. — Dans 
nos serres, on diminuera toujours et on suspendra même parfois 
totalement l'arrosage à ce moment. Dans la culture de quelques 
genres (Camarotis et Sarcochilus), on ne devra arroser que lorsque 
les feuilles se rident. Pendant la période de repos, convient-il 
de suspendre tout à fait les arrosements ? La solution de cette 
question dépend de la nature même du repos de la plante. 
Celui-ci se produit-il par suite d’un abaissement de la tempéra- 
ture, comme c’est le cas chez les Orchidées indigènes, Les arro- 
sements doivent être suspendus, le compost doit être tenu dans 


(1) L’Odontoglossum crispum fleurit en toute saison, mais surtout de mai à 
juin.On doit lui donner un repos léger et fort court après la floraison. L'Odon- 
toglossum grande fleurit en septembre et octobre et demande un repos modéré 
mais assez long (octobre à mars). 


(2) Ces Cattleya aiment la chaleur et l'humidité pendant leur végétation. 


Dot 
un état de sécheresse relative. S'agit-il au contraire d’Orchi- 
dées tropicales, la privation d'eau ne doit pas être absolue; 
des arrosements seront donnés, en petite quantité il est vrai, 
tous les huit jours environ; car il ne faut pas perdre de vue 
que ces périodes de repos correspondent pour ces Orchidées 
aux journées les plus chaudes des tropiques, et que ces journées 
brûlantes sont suivies de nuits où la condensation de l'humidité 
se fait sous la forme d’abondantes rosées. Maintenir les rhizomes 
et les pseudo-bulbes pleins et gonflés pendant la période du 
repos sans exciter la végétation, telle est la règle. Si le pseudo- 
bulbe est ridé, la végétation de l’année suivante s’en ressent; 
elle est plus faible, et souvent la vie de la plante est compromise. 

Les Orchidées des régions tropicales montagneuses, végétant 
toute l’année, ont un besoin de repos moins marqué. Pour 
celles-ci, comme pour celles des îles océaniennes, le repos ne 
se manifeste que par un ralentissement de la végétation; il suffit 
de donner des arrosements moins copieux (Cælogyne cristata 
(fig. 207), C. Dayana (fig. 299), Paphiopedium, Masdevallia, etc.). 
Plus froide est la patrie d’une Orchidée, plus longue doit être la 
durée de son repos; ainsi les Orchidées de serre froide seront 
maintenues à l'état de repos pendant quatre à cinq mois, de la 
fin d'octobre au mois d’avril, alors que d'autres se contenteront 
de quelques semaines. 

Les Orchidées à tiges caulescentes, celles à petits pseudo-bulbes 
et celles à pseudo-bulbes gros et charnus réclament des traite- 
ments différents. Les premières ne seront jamais sevrées d’arro- 
sements. Quant aux espèces à pseudo-bulbes gorgés de sucs 
abondants, l'humidité atmosphérique de la serre sera suffisante, 
tout au plus faudra-t-il bassiner leurs racines de temps en temps. 
Chez elles, le repos de la végétation se produit généralement 
après la formation du pseudo-bulbe : il y a un temps d’arrêt 
indiqué soit par la perte des feuilles, soit par la fin de la floraison, 
soit par la cessation de tous les phénomènes d’accroissement et 
de développement. Le pseudo-bulbe achève sa maturation et se 
colore plus vivement. 

Les Orchidées à feuilles charnues et de consistance épaisse, 
telles que Oncidium macrochilum, On. splendidum, On. Lancea- 
num, Epidendrum falcatum, etc., demandent un long temps de 


a Le 

repos. Il en est de même des Orchidées à gros pseudo-bulbes 
renflés (Mormodes, Catasetum, Cycnoches, Anguloa, Grammato- 
phyllum, etc.). Au contraire, la végétation d'un certain nombre 
d’Orchidées semble toujours active : citons comme exemples le 
Macroplectrum sesquipedale, le Vanda tricolor, les Masdevallia 
Harryana, M. Lindeni, M. Veitchii, M. Shuttleworthii, les Odon- 
toglossum crispum, Od. Harryanum, Od. luteo-purpureum, Od. odo- 
ratum, Od. Pescatorei, Od. Rossit majus, Od. triumphans, etc. 
Chez ces Orchidées la période de repos n’existe pour ainsi dire 
pas. 


CHAPTIRE VE 


DU RAJEUNISSEMENT ET DE LA MULTIPLICATION 
DES ORCHIDÉES. 


I. RAJEUNISSEMENT. — Lorsque certaines Orchidées épiphytes 
prennent un développement trop considérable, comme les Phalae- 
nopsis, les Vanda, etc., on lestraite comme des plantes importées, 
c'est-à-dire qu'on coupe toutes les racines à quelques centimètres 
des feuilles et qu’on dépose la tige et les feuilles sur un lit de 
sphagnum. De nouvelles racines ne tardent pas à apparaître et 
la plante se développe comme une plante nouvelle. Cette opéra- 
tion s’appelle le rajeunissement. 


II. MULTIPLICATION DES ORCHIDÉES. — Peu de plantes pos- 
sèdent l’énergie vitale des Orchidées. Elles résistent à des causes 
de destruction auxquelles succomberaient bien d’autres végétaux. 
Aussi les voit-on souvent lutter contre la mort et renaître, sinon 
de leurs cendres, du moins de leurs débris. Cette résistance 
permet aux horticulteurs la multiplication des Orchidées par 
bouturage. 

Toutefois la multiplication des Orchidées par d’autres voies 
que les semis ou la division des pieds n’est pas d’une pratique 
courante. Le bouturage n'a pas été perfectionné dans la culture 
des Orchidées comme dans les autres branches de culture. La 
facilité des communications est devenue si grande, les importa- 
tions sont si aisées et si nombreuses qu’on préfère toujours se 


— 560 — 


procurer les plantes dans leur pays d’origine et ne pas recourir 
à la multiplication artificielle, souvent aléatoire, parfois très 
lente et nécessitant toujours des soins minutieux et assidus. 
Ce n’est guère que lorsqu'il s’agit d’une variété obtenue de semis 
ou importée mais fort rare, si rare même qu’on ne pourrait la 
retrouver dans la localité d’où elle provient, que la multiplication 
par des moyens artificiels s’impose et devient inévitable. 


III. MULTIPLICATION PAR DIVISION. — Un grand nombre 
d'Orchidées peuvent être divisées. Les Orchidées terricoles ou 


Fig. 274. — Zygopetalum xanthinum Rcus. f. 


semi-terricoles, qui croissent en touffes, comme les Cypripé- 
dinées, les Sobralia, les Phajus, les Cymbidium, les Arpophyllum, 
les Masdevallia etc. se multiplient surtout de cette manière. 

La meilleure époque pour opérer le sectionnement est celle 
qui suit le repos. On le pratique presque toujours au moment du 
rempotage. On sectionne dans ce cas le pied mère d’une manière 
bien nette, laissant à chaque partie détachée, un bourgeon prêt 
à se développer; quand il s’agit de Cypripédinées, on laisse 
un bourgeon et une pousse en pleine végétation. Beaucoup de 


Loi 


jardiniers préfèrent préparer ce sectionnement; ils procèdent 
en deux fois à cette opération. L'année qui précède le rempotage 
de la plante, au moyen d’un coup de greffoir bien net, ils tran- 
chent aux deux tiers la tige qui porte la pousse de la future 
bouture. Ils écartent les parties sectionnées et séparent com- 
plètement celle-ci, l’année suivante, lors du rempotage. Devons- 
nous ajouter qu’ils surveillent attentivement la section afin 
d'empêcher les moisissures et les microbes d'envahir la plaie? 

Cette méthode n’est applicable aux espèces épiphytes à 
pseudo-bulbes, que lorsque l’exemplaire à multiplier est d’une 
certaine force et pourvu de plusieurs pousses. On peut alors 
entailler le rhizome, de façon à laisser à chaque pousse deux ou 
trois pseudo-bulbes qui serviront à nourrir la nouvelle plante 
jusqu’au moment où ses racines, lui permettront de se suffire à 
elle-même. Pour provoquer la formation de nouvelles pousses, 
on opère en plusieurs fois, la section du rhizome, laissant la 
plante dans le récipient qui la contient. On sépare les parties 
sectionnées après la formation des pousses. En général, les 
pseudo-bulbes étant pourvus à leur base d’yeux latents, chaque 
pseudo-bulbe, même privé de feuilles, peut donner naissance à 
une ou plusieurs pousses et constituer ainsi une nouvelle plante. 
Plus le pseudo-bulbe contient de réserves nutritives, plus grandes 
sont les chances de succès. Ces chances augmentent lorsque le 
pseudo-bulbe est entier, c’est-à-dire détaché au-dessous de son 
point d’insertion sur le rhizome. Elles diminuent lorsqu'il est 
trop âgé ou mal constitué. 

Les Odontoglossum, les Oncidium, les Lycaste, les Cælogyne, les 
Acineta, les Miltonia, les Zygopetalum, etc., en général toutes les 
espèces à pseudo-bulbes charnus, se multiplient aisément par 
bulbes détachés ou isolés. 

Les Catileya, les Laelia, les Schomburgkia et les autres espèces 
à pseudo-bulbes allongés sont pourvues d’yeux latents, non- 
seulement à leur point d'insertion, mais encore à un ou deux 
nœuds au-dessus de celui-ci. Si on les coupe au-dessous de ces 
nœuds et si on les suspend dans un endroit favorable, les yeux 
se développent. Bien des jardiniers connaissent cette faculté des 
Cattleya. Lorsque des tiges accidentellement brisées près de leur 
insertion sur le rhizome, sont suspendues librement dans une 


— 562 — 


atmosphère tiède et humide, elles émettent près de leur base des 
racines adventives et forment bientôt de jeunes plantes prêtes à 
être mises en pots. 

Les Epidendrum à tiges, les Dendrobium, les Thunia, etc. se 
multiplient par tronçons de tige munis de nœuds ou de racines. 

Les Vanda, Aerides, Saccolabium, Angraecum, etc. produisent 
de jeunes pousses qui peuvent être détachées dès qu'elles ont 
atteint une certaine dimension ou lorsqu'elles ont formé des 
racines. On facilite l’émission de celles-ci par une légère incision 
opérée au-dessus de la naissance de la pousse, ou au moyen d’un 
bourrelet de sphagnum. Ces plantes se dégarnissent parfois à la 
base. Lorsqu'il existe suffisamment de racines sur le corps de la 
plante, on peut séparer la tige de la souche, en la coupant un 
peu au-dessous des premières feuilles. Cette souche, convenable- 
ment traitée, ne tarde pas à former de nouvelles pousses qui 
peuvent être sevrées dès qu’elles ont acquis une certaine force. 

Les racèmes des Phalaenopsis donnent souvent naissance à de 
jeunes plantules; on dirait des œilletons. On a rencontré de 
pareilles formations sur les racines d’autres Orchidées (1), à 
l’endroit où se produit une rupture. 

La multiplication des Orchidées par les procédés que nous 
venons d'indiquer nécessite des soins particuliers. On dispose 
les pseudo-bulbes et les tronçons de tiges sur un lit de sphagnum 
vivant de 0",04 à o",05 d'épaisseur, tenu modérément humide 
et à une température un peu plus élevée que celle exigée par les 
plantes faites. Une caisse vitrée de tous côtés, d’un mètre carré 
de base sur 0",50 de hauteur, peut rendre de bons services. Les 
bulbes et tronçons doivent être fréquemment visités mais ne 
peuvent être déplacés qu’en cas de nécessité. On doit empêcher 
la moisissure, la pourriture et les préserver des cloportes et des 
limaces. L’humidité et la température doivent être constantes. 
Quand les jeunes bourgeons apparaissent, on ne tarde pas à voir 


(1) Neottia Nidus-avis, Cyriopodium, Saccolabium micranthum, etc. Ce 
procédé de multiplication est certainement beaucoup plus répandu qu'on ne 
le suppose. Très général chez les plantes à racines charnues non rameuses, 
il est bien connu chez l’Ophioglossum vulgatum et chez les Orobanches. 
Nous avons cité (page go) un certain nombre d'Orchidées à racine prolifère. 


DR 7 | 


poindre les racines. Dès lors, on peut rempoter dans le compost 
approprié à chaque espèce. Bien que ces moyens de reproduction 
exigent des soins, de la patience et du temps, nous avons vu des 
plantes nées de bulbes détachés, fleurir dès la troisième année. 


III. SEMis. — C’est surtout dans la pratique horticole, quand 
il s’agit d'obtenir des hybrides et des variétés nouvelles, qu’on a 
recours aux semis pour multiplier les Orchidées. 

La fécondation a été faite, le fruit s’est développé, il s'ouvre 
(Ag. 198 et 202), le moment du semis est venu. Afin d’éviter la 
perte des premières graines — les meilleures d’après certains 
semeurs experts — on place directement sous le fruit, à l’époque 
de la maturité, le compost sur lequel on compte faire germer les 
graines. 

On choisit un compost déjà ancien. Le sphagnum trop vigou- 
reux étoufferait la jeune plante. Si les graines sont fertiles, 
avant le sixième mois (1), on verra se former de petits globules 
verts, ayant la grosseur d’une tête d’épingle ordinaire, sur les- 
quels apparaîtront bientôt les rudiments de feuilles et de racines 
(fig. 199, D, E, F, G). À ce moment, on les enlève au moyen 
d'un bâton effilé et pointu, humecté d’eau afin de permettre 
l'adhésion de la petite plante; on la place dans de petits pots 
cubiques en terre cuite, remplis de compost frais. Ce compost est 
formé de terre fibreuse, de sable blanc grossier et de sphagnum. 
Les pots n’ont que o",03 de côté. On les met les uns à côté des 
autres dans une terrine plus grande en les y calant au moyen de 
sphagnum, et on les suspend le plus près possible du toit vitré 
de la serre. Avant de se servir de ces pots cubiques, on les 
immerge dans l’eau ainsi que le sphagnum. Une fois les graines 
semées, il faut éviter les arrosages et les seringages violents 
qui projetteraient la plante hors du pot. On ne doit donner au 
semis que des bassinages légers faits au moyen d’une seringue 
très fine. 

Inutile de dire, croyons-nous, qu'avant le développement com- 
plet de la plante, il ne peut être question de lui donner une 


(1) Il est rare de voir une graine d'Orchidée se développer encore le septième 
mois après le semis. 


en T — 
période de repos bien accusée. Au contraire, comme nous l’avons 
fait observer (p. 233), la réussite des semis d’Orchidées dépend 
essentiellement de la régularité des conditions du milieu dans 
lequel ces semis se développent. 

Le jardinier indiquera toujours avec soin sur l’étiquette du 
semis le nom des parents; l’amateur consignera de même sur 
l'étiquette de la plante établie la filiation du nouvel hybride. 
Beaucoup d'amateurs imitant les procédés des Studbooks de 
la race chevaline, inscrivent à côté du nom de l’hybride toute sa 
généalogie en quelques lignes. Nous donnerons comme exemple 
de ces inscriptions,celle d’un hybride récent obtenu par M. Seden 
chez M. Veitch à Chelsea, le Dendrobium Cordelia. 


D. aureum ©. | D. japonicum ©. 
Dendrobium D. X endocharisQ. ) 
*\Cordeha, D. X euosmum. | D. aureum co”. 
| v. leucopterum co”. 


D. nobile o. 


On doit lire ce tableau comme il suit: Le D. japonicum 
fécondé par le D. aureum a donné le D. X endocharis. Cet hybride 
du premier degré fécondé à son tour par le D. nobile a produit 
le D. X euosmum. La variété leucopterum de cet hybride au 
deuxième degré a servi à féconder le D. aureum. Le produit est 
le D. X Cordelia. 


Fe CHAPITRE VII. 


ENNEMIS ET AMIS DE L'ORCHIDÉE. 


LES ENNEMIS. 


I. LES ALGUES. — Au premier rang des ennemis de l'Orchi- 
dée, il faut ranger toutes ces végétations filamenteuses qu'appor- 
tent les eaux d’arrosages — Oscillaires, Palmella, Vaucheries, 


— auxquelles s'ajoutent 
toujours de nombreuses 
Bactéries. L'eau stagnante 
est le milieu par excellence 
de ces plantes inférieures. 
Leur présence dénote un 
jardinier négligent, car il 
est facile de les éviter. On 
ne les rencontre pas dans 
les serres bien tenues, où 
les plantes sont arrosées 
d'une manière convenable. 


te À ANA \a 6" 


Fig. 275. — Cladosporium orchidsarum 
(fort grossi). 


Des arrosements judicieusement faits, une aération prudemment 
conduite, tels sont les meilleurs moyens à employer pour éviter 
l’envahissement des Algues de toute nature. 


39 


II. CHAMPIGNONS MICROSCOPIQUES. — Des taches noires appa- 
raissent souvent sur les feuilles d’Orchidées. Examinées au 
microscope, on voit qu’elles sont causées par un parasite, le 
Cladosporium orchidearum (fig. 275). Ce Champignon se présente 
sous la forme conidienne, c’est-à-dire que sa dissémination se 
fait par des spores qui apparaissent directement à l’extrémité des 
fillaments mycéliens. Ce Champignon s'insinue entre les cellules 
de la feuille, s’installe dans son épaisseur et la détruit, formant 
généralement sur la face inférieure des taches noires arrondies 
(fig. 276). On le rencontre souvent sur les Cattleya et les Laelia. 
Au début d’une attaque 
de Cladosporium, il est 
possible de sauver l'Or- 
chidée en enlevant au 
couteau la partie malade 
et en recouvrant la bles- 
sure d’une légère couche 
de charbon de bois. Si 
l'attaque est plus an- 
cienne, si le parasite a 
largement envahi Ja 
plante, il provoque la 
mort de celle-ci par la 
pourriture des tissus. Ces 
parasites végétaux se 
rencontrent rarement sur 


y, fl 
PAU 
vi ce il 


SE M les plantes saines et vi- 


lj° 

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“ 
LUE 


L 


Fig. 276. — Face inférieure d’une feuille de ce 
Cattleya attaquée par le Cladosporium orchi- CRISE Ils PRESS 
dearum. sent sur les Orchidées 


malingres, épuisées, affaiblies, ou bien encore lorsque Îles racines 
plongent dans des matériaux en putréfaction, ou lorsque la cul- 
ture est faite dans un local trop fermé, mal ventilé. Il faut, pour 
les combattre, suspendre les arrosements et augmenter la venti- 
lation de la serre. Les Odontoglossum et le Vanda cœrulea sont 
également sujets aux attaques de ce champignon quand ils sont 
tenus trop humides ou cultivés dans une serre trop froide, et quand 
en hiver la ventilation de la serre est défectueuse. Soustraire la 
plante à ces influences morbides, tel est le seul remède à conseiller. 


Pour enrayer le développement de ce champignon, on peut 
essayer les lavages à l'eau cupro-sodique; le sulfate de cuivre (1) 


à dose très diluée (‘/..) tue les spores du Cladosporium 
orchidearum. 


III. INSECTES. — Bien plus que les Algues et les Champignons 
microscopiques, les insectes sont de redoutables ennemis. 
L'insecte serait même le plus terrible ennemi de l'Orchidée si 
le jardinier ignorant n'existait pas! 

Les insectes sont légion. Les uns sont microscopiques, comme 
les Thrips, les Coccus, les Poux, etc. ; les autres sont visibles à 
l’œil nu : Blattes, Fourmis, Charançons, 
Forficules, etc. Les uns s’attaquent aux 
racines comme l Embia(fig.277), aux pseudo- 
bulbes comme le Xyloborus (fig. 280) et aux 
feuilles comme les Thrips; les autres aux 
jeunes pousses, aux boutons et aux fleurs. 
Les uns, indigènes comme les Fourmis ou 
naturalisés comme les Blattes, les autres 
exotiques comme le Isosoma orchidearum 
qui infeste les Caïtleya ou le Xyloborus per- 
forans (fig. 280), si funeste aux Dendrobium. 
Un certain nombre de procédés ont été pré- 
conisés pour la destruction de ces insectes; 
mais, de tous les moyens, le meilleur, le plus 
efficace, le plus certain, sera toujours une 
brosse ou une éponge imbibée d’eau et maniée 


par la main adroite d’un jardinier soigneux. LL. 
Fig. 277. — KRacmes 


Pour empêcher l’apparition du plus grand orchidées attaquées 
nombre de ces insectes, il faut éviter decul- par l'Embia. 


tiver dans le voisinage des Orchidées des plantes qui sont parti- 
culièrement exposées à leurs attaques. 


IV. Moyens PRÉVENTIFS. — Les Fourmis et les insectes ailés 
s'introduisent aisément à l’intérieur d’une serre. La glu,le miel, 


(1) Un gramme par litre d’eau. 


le sirop arrêteront les fourmis. Des obturateurs en toile lâche 
ou en tissus métalliques empêchent l'invasion des mouches et des 


autres insectes ailés qui, buti- 
nant de fleur en fleur, trans- 
portent les pollinies sur les 
gynostèmes et, fécondant les 
fleurs, diminuent la durée de 
leur épanouissement. 

Quant aux insectes exo- 
tiques, il faut surtout éviter 
de les introduire soi-même 
dans la serre. On néglige 


Fig. 278. — Camaria brésilien. trop souvent d'examiner at- 


tentivement les plantes qu’on achète. Si on introduit dans une 
serre une plante infestée, on a enfermé soi-même le loup dans 


la bergerie. 


Il n’est pas rare de voir une plante importée des pays chauds 
amener avec elle les œufs ou les larves d’un insecte, commensal 


Fig. 279. — Xyloborus perfo- 
rans. 

1. Insecte (grandeur naturelle). 

2. Le même grossi 8 fois. 


habituel de l'espèce dans son pays 
natal. Les uns, comme ce Camaria 
brésilien (fig. 278) dont le Gardeners’ 
Chronicle a signalé les méfaits, ne vi- 
vent que peu de temps et ne font pas 
souche : mais la plupart comme les 
Isosoma et les Charançons causent des 
dégâts considérables et, se reprodui- 
sant, peuvent infester toute la serre. 
Les Isosoma attaquent les Catileya, et 
les Curculio, les Xyloborus ravagent 
les Dendrobium, etc. Importés les uns 
d'Amérique, les autres de l’Archipel 
malais, ces insectes font les mêmes 
dégâts. La femelle, à l'aide de sa 
tarière, perce un trou dans les tissus 
végétaux et pond ses œufs. La larve se 


développe dans le tissu spongieux au détriment de la plante, et 
creuse des galeries où elle se transforme (fig. 280). Souvent même 
elle provoque une turgescence des tissus qui empêche la crois- 


560 
sance de la plante. Parvenu à son état parfait, l’insecte abandonne 
la plante qui l’a nourri, 
pour s’accoupler. Le jar- 
dinier apportera le plus 
grand soin à surveiller 
toute plante attaquée afin 
de détruire, au moment 
de leur sortie, les insectes 
parfaits et d’éviter ainsi 
que des générations suc- 
cessives s’établissent au 
cœur de ses cultures. 
Ce danger est si grand 
que nous n'hésitons pas à 
engager l’amateur à cou- 
per immédiatement et à 
brûler les parties attaquées 
ou les tubérosités qui ren- 
ferment les larves. 


V. INSECTICIDES. — 
Quand on introduit une 
plante dans sa serre, quelle 
qu’en soit l'origine, il faut 
toujours l’examiner avec 
le plus grand soin,enlever 
les parties desséchées, 
laver soigneusement et à 
plusieurs reprises les 
feuilles et les tiges soit à 
l'eau pure, soit avec une 
solution insecticide quel- 
conque. Le choix de 


celle-ci nest pas limité : Fig. 280. — Tige de Dendrobium attaquée par 
chaque jour des inventeurs le Xyloborus perforans. 

nous présentent de nouveaux insecticides. Le plus ancien, le 
plus certain, semble toujours être le tabac, soit qu’on l’emploie 
réduit en poudre très fine, en solution plus ou moins concentrée 


ro 
ou en vapeur plus ou moins dense. Il agit par sa nicotine. 

La poudre de tabac, impalpable, est préconisée contre les 
Thrips, l’Araignée rouge, etc. : elle présente le très grave incon- 
vénient de rester dans les replis de la feuille et de corroder les 
jeunes pousses. Aussi donne-t-on la préférence aux décoctions et 
aux fumigations. 

Le nombre des formules d’eau nicotinisée est fabuleux. Chaque 
jardinier a la sienne : les unes — ce sont les moins nombreuses 
— aboutissent à une décoction plus ou moins concentrée de 
feuilles de tabac dans de l'eau; les autres, à un mélange d’eau, 
de tabac et de savon noir ou de soufre (1), etc., etc. 

En règle générale, il faut éviter de seringuer les plantes avec 
de l’eau contenant en dissolution un insecticide quelconque. Se 
déposant à la base des feuilles en trop 
grande quantité, le remède peut devenir 
plus nuisible que le mal. Quand on doit 
employer une eau contenant des sub- 
stances insecticides, mieux vaut toujours 
recourir au lavage des feuilles à l'éponge, 
et, si par hasard, on est contraint de 
recourir au seringage, il faut coucher 
les Orchidées sur le flanc et les seringuer 


une seconde fois à l’eau pure, avant de 
les remettre en place. 
Le meilleur moyen de combattre le 


plus grand nombre des insectes micros- 
“ASE por , Copiques consiste à faire des fumigations 

nicotine. de tabac. Il existe un appareil fort ingé- 
nieux (fig. 281) permettant au moyen d’une lampe à alcool de 
fumiguer la serre aussi rapidement et aussi souvent qu'on le 
souhaite. L’orchidophile ne doit jamais perdre de vue que d’une 
part les fumigations trop prolongées ou trop fortes sont mor- 
telles pour certaines Orchidées : Odontoglossum, Masdevallia, etc., 


(1) On obtient une solution très active en faisant bouillir 100 grammes de 
fleur de soufre, 60 grammes de savon noir, 25 grammes de côtes de tabac, dans 
deux litres d’eau; on dilue cette solution dans dix litres d’eau et on la laisse 
refroidir avant de s’en servir. — Le savon dans ce mélange sert seulement à 
permettre à la solution de mouiller la feuille. 


ide Loi 
et que d’autre part, si leur durée est trop courte, elles sont ineffi- 
caces. Les fumigations légères et fréquemment répétées sont 
préférables ; il est très facile de les faire avec le vaporisateur. 

À son défaut, les jardiniers ont recours à un procédé plus 
rudimentaire : ils font chauffer au rouge des carreaux de terre 
cuite ou des briques et versent sur elles la nicotine, non point 
l'alcaloïde des chimistes, mais celle des jardiniers, jus de 
tabac plus ou moins concentré obtenu par la macération ou la 
décoction des tiges, des côtes ou des feuilles de tabac. Souvent 
même on se borne à placer sur un petit grillage lâche, placé au- 
dessus des tuyaux de chauffage, une couche de quelques centi- 
mètres d'épaisseur de pétioles et de côtes de feuilles de tabac, 
matières fort peu coûteuses. On les arrose deux fois par jour. 
L'évaporation de l’eau produit une légère intoxication perma- 
nente de la serre qui empêche le développement de nombreux 
parasites. 

Quelques jardiniers remplacent les fumigations de tabac par la 
vapeur de soufre. Ils mélangent le soufre avec de la glu et endui- 
sent de ce mélange les tuyaux de la serre quand ils sont chauds: 
mais cette opération ne peut se faire que lorsqu'il y a beaucoup 
d'humidité et peu de chaleur dans la serre; sinon, comme on pro- 
voque la formation notable d'acide sulfureux, les plantes qu'on 
voulait préserver, périssent inévitablement. 


VI. Tartps. — Les Thrips (fig. 282) forment une nombreuse 
famille d'insectes hémiptères dont la rapidité de multiplication 
est prodigieuse. Ces minuscules ennemis — les plus grands n’ont 
pas deux millimètres — 
s’attaquent surtout aux 
feuilles d'Orchidées : ils 
en rongent l’épiderme 
et les couvrent de taches 
grises, ternes; parfois 
même ils en déterminent 
la chûte. Ces insectes 


Fig. 282. — a) Thrips minutissima, fortement 
se logent sur les feuilles, grossi; b) larve de Thrips, grossie, 


sur les pots, même sur les étiquettes en bois. Il est rare de 
les rencontrer dans une serre bien tenue et bien aérée. 


7e — 

Pour combattre les Thrips, il faut employer les fumigations 
et laver les feuilles à l'eau nicotinisée, c’est-à-dire au moyen 
d’une solution de 250 grammes de savon noir et de 250 grammes 
de tabac dans quatre litres d'eau. Beaucoup de jardiniers trem- 
pent les feuilles et les pseudo-bulbes dans une solution plus 
savonneuse mais moins nicotinisée. Ils ajoutent alors à la 
solution quelques grammes de poudre de pyrèthre et de soufre; 
mais avant que les feuilles soient complètement sèches, ils les 
plongent dans un baquet d’eau fraîche. 


VII. PucERONSs. — Les pucerons, les plus féconds de tous 
les insectes, — la famille d’un seul puceron se compose en une 
année d’un quintillion d’individus! — influent sur les Orchidées 
comme sur tous les végétaux; leur sécrétion miellée les salit 
et leur piqûre provoque des déformations plus ou moins consi- 
dérables de l’organe attaqué. Au printemps un puceron vert 
apparaît sur les jeunes pousses. Sa présence est souvent l’indice 
d’une aération insuffisante. On en délivre les plantes soit par 
une immersion rapide dans une eau tiède à 38°, ou légèrement 
nicotinisée, soit par la vaporisation du tabac dans la serre. Mais, 
l'immersion ou la vaporisation faite, il faut laver à grande eau 
les feuilles sur lesquelles les pucerons ont séjourné afin d’en- 
lever la miellée visqueuse, gluante, sécrétée par ces insectes. Un 
des meilleurs moyens préconisés pour exercer la patience du 
jardinier et détruire les pucerons est l’emploi d'un pinceau fin 
imbibé d’alcool ou de benzine. Tout puceron touché meurt. 
Par la rapidité de leur évaporation, ces substances n'exercent 
aucune action fâcheuse sur les végétaux. 


VIII. CocHENILLES, KERMÈS, etc. — Les Coccides, les Aphis 
ou mouches vertes sont avec les Thrips, au nombre des plus 
microscopiques ennemis des Orchidées. Dans une atmosphère 
sèche, ils se multiplient très rapidement. Leur présence sera 
presque toujours l'indice d’une humidité insuffisante. En char- 
geant l’air d'humidité, c'est-à-dire en aérant et en aspergeant le 
sol et les plantes, ces insectes parasites disparaissent rapidement. 

C’est surtout dans les serres mal tenues qu'on rencontre les 
Cochenilles (Coccus ou Kermès, fig. 283). On reconnaît leur 


EU CNE 

présence quand apparaissent sur les feuilles et les pseudo-bulbes 
de petites écailles grises ou brunes, parfois vernissées ; ce sont 
les nids dans lesquels habitent les Kermès. Les Coccus s’attaquent 
surtout aux feuilles des Saccolabium, des Aerides et des Caælo- 
gyne; ils recherchent encore plusle feuillage des Pteris. M. Alfred 
van Imschoot ayant observé cette prédilection 
des Coccus pour ce genre de Fougères eut l’idée 
de placer des Pferis entre ses Vanda et ses Aeri- 
des. Bientôt il s'aperçut que les Kermès envahis- 
saient les Pferis et laissaient propres et saines 
ses belles Orchidées. C’est une application ori- Fe 283. — Coccus 

es serres, très 
ginale de la méthode des plantes-pièges à la  grossi. 
culture sous verre. 

On préserve les Orchidées de leurs attaques en lavant fréquem- 
ment avec une éponge et de l'eau bien fraîche les feuilles et les 
pseudo-bulbes. Quand le Kermès se sera établi sur une plante, 
lavez-la avec une infusion prolongée (24 heures au moins) et 
filtrée de 250 grammes de savon noir, 3ogram- 
mes de tabac, 3 cuillerées à bouche de téré- 
benthine dans 4,50 litres d’eau de pluie. 

Le pou blanc (Dactyolopus adonidum, 
fig. 284) est très redoutable surtout pour les 
Cattleya. Il a une forme bien caractéristique : 
la femelle est oblongue (fig. 284), d'un blanc 
un peu jaunâtre, saupoudrée d’une matière 
cireuse blanche, ornée d’une bordure d’appen- 
dices laineux également cireux; le mâle est 
brun avec de longues ailes grises, rougeâtres 
vers le bord central et de longs balanciers pie. 284. — Dactyolo- 
jaunes terminés par une seule soie recourbée. Pus adonidum (Pou 

blanc); 4) grandeur 

On recommande, pour en préserver les naturelle: 8) forte- 
plantes, l'emploi de savon noir contenant le "nt 8rossi. 
moins de caustique possible : on mouille légèrement le soir, puis 
on enduit les feuilles et les pseudo-bulbes: le lendemain on les 
lave à grande eau. On se débarrasse aussi très facilement du pou 
farineux, au moyen d’un pinceau imbibé d’alcool à 35°. Un badi- 
geonnage léger suffit pour tuer le pou blanc. Les poils cotonneux 
de l'insecte étant enlevés, celui-ci meurt aussitôt. Le pou blanc ou 


Fi 


farineux, si fréquent dans le voisinage des Dracaena, ne résiste pas 
non plus à l’application de quelques pincées de fleur de soufre. 


IX. ARAIGNÉE ROUGE ET ACARIENS. — L’araignée rouge, 
Gamasus telarius L., est non pas un insecte proprement dit, 
mais un arachnide. C’est un ennemi plus terrible que les Thrips. 
Il semble avoir une préférence marquée pour les Dendrobium. 
Presque invisible à l’œil nu, l’araignée rouge a l'instinct colo- 
nisateur : c'est par bande qu’elle s'établit sous les feuilles dont 
elle suce les sucs. Bientôt, la feuille se flétrit, la plante devient 
malade et meurt. La sécheresse de l’atmosphère, les rayons 
brûlants du soleil favorisent beaucoup le développement de 

| ces redoutables acariens. Ils apparaissent 
surtout dans les mois les plus chauds de 
l’année : les feuilles de la plante attaquée 
prennent alors à leur face inférieure un 
aspect grisâtre. On combat l’araignée au 
moyen de seringages et de lavages fréquents 
à l’eau pure. Le comte du Buysson, dont 
nul ne peut méconnaître les judicieux avis, 


Fig. 283. — Gamasus TCOmmande même de plonger les plantes 
telarius (Araïgnée jinfestées dans de l’eau ayant 38 à 45°C, et si 
rouge) fortement j 
grossi. les sujets sont trop forts, de les coucher sur 


le flanc et de seringuer abondamment la plante dans cette 
position avec de l’eau ayant une température de 40 à 50° C. 

Ce n’est que par l'aération de la serre et des lavages répétés 
qu’on parviendra à combattre efficacement les Thrips, les Cocci- 
des, les Mouches vertes, les Poux, les Pucerons, 
les Acares (Acarus des Orchidées, fig. 286), etc. 

En Angleterre on emploie l’infusion de Îa 
manière suivante : Laisser infuser dans cinq litres 
d’eau 250 grammes de savon noir, 30 grammes de 
tabac ou 5 centilitres de jus de tabac fort concentré 
Fig. 286. — Aca- €t trois cuillerées d'essence de térébenthine. Après 

is HER 48 heures, on filtre le mélange et on le met en 

grossi, bouteilles bien fermées. Il s’y conserve un certain 
temps ; il suffit d’y ajouter un peu d’eau fraîche au moment de 
l’employer. 


NE © Fo 

X. BLATTES. — Les Blattes (Blatta germanica, orientalis, 
thoracica, etc.) sont de gros insectes nocturnes, extrèmement 
agiles, aux couleurs ternes, sombres, grises, brunes ou noires. 
Ce sont des ennemis très redoutables : leurs ravages sont rapides, 
considérables, inattendus. D'origine tro- 
picale, ces bêtes noires (tel est leur nom, 3 ÈS 
aussi populaire que celui de Cafards ou 
Cancrelats) se plaisent dans la tempéra- 
ture élevée de nos serres chaudes; elles 
s’y dissimulent avec la plus grande 
facilité. Ces orthoptères (fig. 287) ont 
une prédilection pour les jeunes racines 
et les tiges florales : en une nuit, ils 


rongent toutes les racines d’un Cattleya. / \ 
Se tenant le jour sous les pots et sous F8: 287- — Blatte thoracique, 
les terrines, ils sortent le soir et choisissent pour pâture les 
tissus les plus succulents et les plus tendres. 

L’orchidophile doit leur faire une guerre continue : celle-ci est 
rendue d’autant plus difficile qu’à la faveur de l’aplatissement de 
leur corps et de l’élasticité de leurs téguments, ils peuvent se 
blottir dans les fentes les plus étroites. Jour et nuit, il leur 
tendra des pièges ou leur offrira comme appât des pâtes empoi- 
sonnées. Comme pièges, il emploiera des cloches de verre, pla- 
cées de niveau avec le sol et remplies jusqu’au milieu de leur 
hauteur de mélasse étendue d'eau. La blatte vorace et gour- 
mande se laisse choir dans le vase, et ne pouvant remonter le 
long des parois du verre, elle se noie. La poudre d’Helleborus 
niger, l’eau de borax (4 p. °/.) les attirent également. Les pâtes 
empoisonnées, toujours d’un maniement dan- 
gereux, sont le plus souvent des mélanges à 
base de phosphore trituré avec du suif,du lard 
ou du miel. On préconise l’emploi d’un mé- 
lange de suif et d'arsenic intimement malaxés, 
étendu sur un bâton posé dans un pot, celui 
d'un mélange de farine et de sels de plomb, = RP 
celui de sucre en poudre et de phosphore, ou perce-oreille, 


) 


placés pendant la nuit sur des fragments d’écailles ou dans des 
coquilles d’huître. 


er 

XI. FoRFICULES. — Les forficules ou perce-oreilles (fig. 288) 
sont aussi des orthoptères broyeurs; ils contusionnent, brisent 
ou coupent avec leurs mandibules les racines et même les 
hampes florales des Orchidées. Une chasse active peut seule en 
débarrasser la serre. Noctambules, ils restent cachés pendant le 
jour. Pour les prendre on dispose sur les gradins des sabots 
de mouton, des carottes ou des pommes de terre évidées ou 
des tiges creuses comme les tiges fistuleuses d’ombellifères. Les 
perce-oreilles s’y retirent pendant le jour. Il suffit de secouer 
ces pièges dans la matinée pour prendre les insectes. 


XII. MyrrAPopes.— Le Centipède à trente-deux pattes (Litho- 
bius forticatus) a une grosse tête et une forte paire de machoires. 
Boisduval affirme qu'ilest 
utile au jardinier. Il ne 
faut pas le confondre avec 
les Géophiles ou Scolo- 
pendres (Geophilus longi- 
cornis, fig. 289). Ceux-ci 
n’attaquent pas les plan- 
Fig. 289. — Géophile longicorne. tes saines, mais ce sont 


de redoutables commensaux surtout pour les plantes blessées. 
Ces scolopendres avivent les blessures et rendent la cicatrisation 
des tissus souvent fort difficile. On leur tend les mêmes pièges 
qu'aux limaces : les rondelles de carotte coupées. 


XIII. LomBrics. — Les lombrics sont introduits fréquemment 
dans les serres, parmi les matériaux même qui servent aux com- 
posts. Quand le lombric ou ver de terre (Lombricus terrestris) 
pénètre dans les pots d’Orchidées, il cause un trouble profond 
aux racines par le mouvement perpétuel de la terre qu’il taraude 
sans cesse, rejetant au dehors celle qu'il a avalée pendant son 
travail souterrain. L’orchidophile évitera ces hôtes incommodes 
en examinant avec soin la terre fibreuse, le sphagnum, les 
tessons qu’il emploie et en plaçant les pots sur une couche de 
cendrée ou sur des lattis de bois. 

Un bon moyen de faire sortir les lombrics de leurs retraites, 
est de plonger le pot dans l’eau jusqu’au bord : ou bien les vers 


EC) ET 

ne peuvent fuir assez vite et ils sont noyés, ou bien ils sortent 
à la surface et on les prend à la main. Quelques jardiniers 
arrosent les pots soupçonnés de renfermer des vers de terre 
soit avec de l’eau à 45° C, soit avec une eau additionnée de 
1o p. °/, de vinaigre, soit avec un mélange de suie (/.), 
d'urine (:/;) et d’eau (:/,). Souvent pour faire apparaître les 
vers de terre, il suffira de donner quelques coups secs contre 
les parois du pot. Effrayé, le ver monte à la surface et il est 
aisé de l’enlever quand il apparaît. 


XIV.CLoPporTEs.— Les cloportes ou cochons de Saint Antoine 
(Oniscus asellus, fig. 290), sont de petits crustacés, hélas! très 
prolifiques, qui s’attaquent surtout aux jeunes racines. Se plaisant 
dans des endroits frais, ces crustacés isopodes ne peuvent vivre 
que dans des lieux humides. Il est fort difficile de les déloger des 
serres. En plongeant lentement les pots dans un baquet plein 
d’eau, les cloportes abandonnent leurs retraites et le jardinier les 
prend aisément à la main. On se sert encore de pièges pour les 
capturer. On les attire avec du bois pourri, des 
laitues fraîches ou de la mousse humide. Les 
cloportes s’y rassemblent. En visitant les 
pièges à la lumière une ou deux heures après 
la tombée de la nuit, il est aisé de les prendre 
et de les détruire en plongeant piège et vic- 
times dans l’eau bouillante. Les rondelles de Fig- 290. — Cioporte. 
navets ou de pommes de terre évidées par le milieu, sont un 
appât très usité. 

Fuyant la lumière, les cloportes recherchent l'ombre pendant 
la journée. A tout autre abri, ils préfèrent celui d’un balai de 
bouleau ou de chiendent. En le relevant quelques fois pendant la 


journée, le jardinier secouera les parasites dans un seau d’eau 
et ils périront. 


XV. Limaces. — De tous les ennemis de l’Orchidée, aucun 
n'est plus vorace que la limace (fig. 291). La plus commune 
(Limax agrestis) reste plus petite et plus délicate dans les 
serres; c’est la nuit qu’elle circule et cherche sa nourriture : à ce 
moment, le jardinier doit, une lanterne à la main, visiter les 
serres et tuer tous les maraudeurs qu’il rencontre. 


La grosse limace noire (Limax rufus) peut causer les plus 
grands dégats. Heureusement, elle décèle sa présence parle sillon 
visqueux que laisse son passage sur la route parcourue. Le jardi- 
nier n'a qu à le suivre pour s'emparer de ce terrible maraudeur. 

Une autre limace (Helix alliaria) est plus redoutable encore : 
braconnier nocturne, grâce à sa couleur et à sa petite taille 
(o",o1), elle se glisse inaperçue entre les pots et les feuilles, 
dévorant les jeunes racines, les pousses savoureuses, les hampes 
florales aux boutons presque épanouis. Hermaphrodite, ce mol- 
lusque dépose ses œufs dans les tessons de drainage et dans le 
sphagnum : l'œil le plus exercé, le plus attentif, ne peut les y 
découvrir. Il faut lui faire une chasse sans merci. A cette fin, on 
lui tend une infinité de pièges : l’un des plus simples consiste à 
déposer de la mousse sèche dans les parties les plus chaudes de 
la serre : deux ou trois fois par semaine, on visite cette mousse 
et on tue les mollusques qui s’y sont refugiés. Une poignée de 

son, ou mieux un peu de colle de 
=, pâte, déposée sous de grands 
pots légèrement soulevés d’un 
Fig. 291. — Limace. côté, attire les limaces et permet 

de détruire un grand nombre de ces mollusques. Nous avons déjà 
indiqué l'emploi des feuilles de laitue ou de rondelles de pommes 


de terre creusées au centre sous lesquelles se réfugient en grand 
nombre ces petits animaux. Soir et matin, on relève ces amorces 
et on détruit ceux qui s'y sont réfugiés. 

Comme mesure préventive, M. Perret recommande de badi- 
geonner les murs et les supports des tablettes au moyen d’un 
liquide composé de lait de chaux et de sulfate de cuivre. 
Visqueuses, humides, les limaces touchant un corps revêtu de 
sulfate de cuivre, dissolvent elles-mêmes le poison cuprique qui 
leur est mortel. La suie, le plâtre, la chaux vive en poudre, la 
cendre qui s’attachent à leur corps, font également périr ces 
mollusques ou bien leur sont assez désagréables pour les éloigner. 

Les limaces plus que tous les autres destructeurs, sont friandes 
des hampes florales et, attirées par la miellée qu’exsudent les 
boutons et les fleurs, elles font volontiers l’ascension de celles-ci. 
Pour éviter ces attaques, les orchidophiles prévoyants entourent 
d’une bague circulaire de ouate la base des racèmes. 


hs à 4 mé 


ve LM 

XVI. CHARANÇONS. — Le petit charançon (Curculio), à l’état 
parfait, est très friand des fleurs d’Orchidées, surtout de celles 
des Phalaenopsis. On lui fait une chasse active. Surpris, cet 
insecte se laisse tomber et reste dans une immobilité absolue. 
On peut alors s'en emparer aisément. Comme il recherche les 
endroits ombragés pendant la chaleur brûlante du midi, on le 
trouvera souvent au milieu de la journée blotti sous les appâts 
à limaces, les feuilles de laitue, etc. 


XVII. FourMis. — Les petites fourmis causent maint souci 
aux orchidophiles. Si elles n’ont pas la puissance de destruc- 
tion des Limaces, des Blattes, voie des forficules, elles abîment 
les fleurs, bouleversent le compost, transportent dans le cœur 
des plantes une quantité de petits débris. Pour s’en débarrasser, 
il faut détruire la fourmilière. L'arrosage à l’eau bouillante est 
le moyen de destruction le plus efficace; mais il est impossible 
à pratiquer si quelque racine se trouve à proximité. Dès lors, ne 
pouvant s'emparer de la citadelle, l’orchidophile doit s'emparer 
des soldats individuellement. La chasse aux Fourmis est malheu- 
reusement longue, peu récréative et peu productive. Mieux vaut 
en charger la tortue de rivière (tortue noire marquée de jaune) ou 
recourir à l'emploi de pièges. Outre ceux que nous avons indiqués: 
os creux, rondelles de navet ou de pommes de terre, nous signa- 
lerons les débris d'animaux et les petits cornets de papier enduits 
intérieurement de miel. On examine ces pièges chaque jour, 
et on détruit les animaux qui s'y sont réfugiés, par une immersion 
dans l’eau bouillante. On peut encore se servir d’un vase au fond 
duquel on a versé et étalé un peu de sirop de fruits. Si le vase est 
en verre ou en porcelaine, les Fourmis et les Blattes ne peuvent 
en sortir. En général les Fourmis aiment les saveurs douces : 
une brosse de chiendent trempée dans l’eau les attire et une 
immersion du balai dans l’eau bouillante tue toute sa garnison. 

Les Fourmis ont, dit-on, l'odorat très sensible : certaines 
odeurs paraissent leur être désagréables. Quelques feuilles 
fraîches de tomate ou de cerfeuil, quelques gouttes d’acide 
phénique ou d’huile de cade ont le don de les faire fuir. Une 
poignée de charbon de bois concassé en menus morceaux et 
jetée sur la fourmilière la fait, dit-on, déserter par les fourmis. 


— 580 — 


LES AMIS. 


I. PRINCIPAUX AUXILIAIRES DU JARDINIER. — Le jardinier 
trouve dans la nature quelques auxiliaires bien peu nombreux, 
mais dont trop souvent encore 
il ignore l’existence ou dont il 
dédaigne bien à tort le pré- 
cieux Concours. 

Nous avons signalé la tortue 
de rivière. Au mêmetitre nous 
pouvons signaler l’orvet (An- 
guis fragilis) et les jolies rai- 
nettes(Hyla arborea, fig. 292), 
vertes l’été, brunes l’hiver. 
Elles se livrent à une chasse incessante des insectes; mais il faut 
éviter de placer ces deux auxiliaires, la tortue et la grenouille, 
dans la même serre : car, avant de songer à poursuivre les 
limaces, la tortue dévorera les rainettes. 


Fig, 292. — Rainette verte. 


Malgré sa laideur et la répugnance presque invincible qu’il 


Fig. 293. — Crapaud. 


provoque, le Crapaud (Bufo vulgaris, fig. 293) est fort utile. 
Constamment en chasse, il passe sa vie à l'affût des insectes. 
C’est le grand destructeur des blattes. Des crapauds sont indis- 
pensables dans une serre un peu grande. Leurs services rachètent 
leur laideur. 


— 581 — 


Les lézards et les salamandres rendent également de précieux 
services en faisant une chasse continuelle aux insectes de toute 
espèce, ainsi qu'aux limaces, aux cloportes et aux autres ennemis 
de nos plantes. 


II. INSECTES UTILES. — Si cet infini vivant, — Michelet 
appelle ainsi le monde des insectes — 
renferme de nombreux adversaires de 
l’Orchidée, il lui offre aussi des défenseurs. 
Ce sont ces insectes carnassiers, ces 
nécrophages qui exercent leur puissance 
immense de destruction, sur les ennemis 
de l’Orchidée. Ils deviennent ainsi les 
policiers et les gardiens de nos cultures. 
Combien de jardiniers et même de bota- 
nistes ignorent les services rendus par les Fig. 204. — Carabe doré. 
Driles qui, guettant le limaçon, vivent de lui et chez lui; par 
les Cicindèles que Linné appelait déjà : Tigrides 
Insectorum, Tigres des insectes, et dont le type 
indigène, le Cicindela campestris, doué d'une mer- 
veilleuse agilité, est si beau avec sa carapace 
vert de mer, sillonnée sur la tête, sur le corselet, ER, 
au bord des élytres, de teintes cuivrées qui bril- °*à 7 points. 
lent au soleil comme des marques de feu, etc., etc. Les Cocci- 
nelles, les Carabes, les Staphylins sont plus 
connus et, partant, plus fréquemment sauve- 
gardés. 


IT. CocciINELLES. — Appartenant à l’ordre 
des coléoptères, les coccinellides méritent toute 
l'attention de l’orchidophile. La bête à bon Dieu Fig. 296. — Larve 
— tel est le nom populaire de la Coccinelle à A Dos: 
sept points (fig. 295) — accomplit dans nos 
serres comme dans nos jardins, sa mission de nous protéger 
des pucerons et d’arrêter leur prodigieux développement. Les 
Coccinelles sont bien reconnaissables à leur corps arrondi, à 
leurs antennes courtes et épaisses, à leurs palpes terminés en 
hachettes, et surtout à leurs tarses invariablement composés 
de trois articles. 


40 


— 582 — 


L’insecte adulte et surtout sa larve d’un gris plombé, portant 
une large tache jaune au devant de la tête, trois petites taches 
rouges sur les côtés, des points noirs, de petits 
bouquets de poils, saisissent les pucerons, les 
kermès, et les hument comme le paysan gobe 
un œuf de poule. A l’automne, quand vous 
rencontrez une colonie de Coccinelles, trans- 
portez-la dans la serre à Orchidée, et vous 
serez payé de ce soin par la destruction énorme 
que ces petits êtres feront, jour et nuit, des 
a larves et des insectes malfaisants. 

odorant à l'état d'in- 

secte parfait. IV. CARABES. — Les Carabiques sont au 
premier rang de nos auxiliaires. C’est une tribu immense de 
guerriers armés jusqu'aux dents, 
qui sous leurs lourdes cuirasses, 
ont une activité brûlante. « Ce 
sont les vrais gardes-champêtres 
qui, jour et nuit, sans trève ni 


repos, protègent nos champs, » 
Fig. 298. — Terrine-support pour disait Michelet, et nos serres, ajou- 
EME terons-nous. Le (Carabe doré 
(fig. 294), bien connu sous le nom vulgaire de Jardinier ou de 
Couturière, mange les chenilles et les limaces. 
Ses larves, d'un brun luisant, presque noir, se 
cachent pendant le jour sous les pierres, sous 
les pots, dans les cavités, et, le soir venu, elles 
chassent avec la même ardeur que les adultes. 
Que de jardiniers ignorent l’aide précieuse de 
cet insecte! Combien n'en est-il pas qui ren- 
contrant ce coléoptère si actif et si vigilant, le 
tuent au lieu de le porter dans leur serre ! 


Fig. 2909. — Onci- 
dium Krameria-  V. STAPHYLINsS. — Le chasseur par excel- 


TETE lence, le destructeur superbe des insectes de 
toute nature, appartient également aux coléoptères. C’est le 
Staphylin odorant (fig. 297), insecte tout noir, aux mandibules 
courbées et acérées, que les Anglais appellent le cheval du 


Schroder, 


u Baron 


de culture appartenant a 


Plante 


£, 


yana RCEs. 


gyne De 


— Cælo 


Fig. 300. 


8 
diable. A l’état parfait c'est un animal carnassier très actif, 
d’une agilité surprenante qui dresse furieusement son abdomen 
en l’air toutes les fois qu'un danger le menace. La larve (fig. 296) 
bien que n'ayant que la tête et les anneaux thoraciques cuirassés, 
est aussi agile que l’insecte adulte : elle se tient cachée sous 
les pierres et ne sort que la nuit. Ces insectes se nourrissent 
surtout de proies vivantes. 


VI. DÉFENSE PRÉVENTIVE. — Quel que soit l’ennemi, mieux 
vaut prévenir ses attaques et mettre l’Orchidée à l’abri des 
incursions de ces dévastateurs qui rampent ou qui marchent. 
La meilleure des défenses est l’eau. Le meilleur moyen de s’en 
servir est d'isoler l’Orchidée sur un piédestal entouré d'eau. Les 
jardiniers autrefois plaçaient un pot renversé au milieu d’un 
baquet d’eau et posaient sur celui-ci la plante à protéger. Les 
potiers ont imaginé aujourd’hui un appareil qui remplit ce service 
(fig. 298). C’est une soucoupe creuse, en terre cuite, au centre de 
laquelle émerge un socle en forme de petite colonnette qui sert de 
support à la plante. Pour entreprendre la conquête de l'ilot où se 
trouve l’Orchidée, l’insecte devrait traverser la zone aqueuse; 
or, les limaces, les blattes, les coccides, les poux, etc. ayant une 
horreur invincible de l’eau, la plante échappe à leurs atteintes. 

Pour préserver les fleurs parfumées et miellées de mainte 
Orchidée, il convient d’entourer leur racème d’un petit tampon 
de ouate placé sous la fleur la plus basse : cette ouate empêche 
les fourmis, les pucerons, les larves avides de miel de s’élever 
jusqu'aux fleurs, objets de leurs convoitises. 


FIN. 


ERRATA ET ADDENDA. 


Page. Ligne. 
2 8 lire : japonicum au lieu de moniliforme. 
6 11 >»  Phajus » Limodorum. 
7 à la note (3) lire 1822 au lieu de 1828. 
II 8 » Mufel au lieu de Martel. 
11 ajouter à la note 11 : Beiträge zur Systematik der Orchideen, dans 


Engler's botanischer Fahrbüchzrn, vol. XIX, 1894. 

12 I » après Vesque : Duchartre {1}, P. van Tieshem (2). 

12 3 » après Rolfe : H. O. Forbes (3), M. T. Masters (4), 

12 28 lire : et, sans se rapporter aux Orchidées, ils doivent cependant ètre 

cités ici, car nombre d'idées exposéss, 

12 ajouter à la note (8), ligne 2 : M. Rolfe est l' FT ENS si érudit qui 
dirige l'excellente revue anglaise : The Orchid Review. Il a 
publié, en 1885, dans le Gardeners' Chronicle la liste fort 
complète des Orchidées cultivées. 


13 11 ajouter : C. Moore (5), Kränzlin (61. SÈYE 
13 à la note (5) ajouter : Rumphia, vol. IV, pp. 38-56, pl. 191-200. 
à la note (8) » Icones Orchidearum austro-africanarum extra- 
tropicarum. Part. I, avec 50 pl. col., 1893. 
à la note (9) » The genus Bromheadia and two new genera 


of Orchids from the East Indies. Journ. 
Lina. Soc. London, XXVIII. p. 331-342. 
153 20 en Angleterre, le recueil classique : The Orchid Review, en Belgique. 


I5 ajouter note (10) : Cool Orchids and how to grow them. 1893. 
22 35 lire: Orchis maculata au lieu de Orchis latifolia. 

45 fig. 21 lire : Pollinarium au lieu de Pollinies. 

46 » 22 » » » 


(1) Note sur le Phalaenopsis Schilleriana, dans le Journal de la Société impériale 
d'horticulture de Paris, vol. VIII, pp. 609-617. 

(2) Recherches sur la structure du Pistil. Mémoires de l'Institut, vol. XXI, 
PP- 140-145 | | 

(3) On the Contrivances for ensuring self-fertilization in some tropical Orchids. 
Journal of the Linnean Society, vol. XXI, pp. 538-548. 

(4) On the floral Conformaition of th: Genus Cybripedium. Journ. Lin. Soc., 
vol. XXII, pp. 402-422, et Teratology of Orchids in : Manual of Orchidaceous 
planis. Part X, pp. 37-49. James Veitch and Sons, 1894. 

(5) Handbook of the Flora of New South Wales, pp. 381-407, 1893. 

(6) Orchidaceae africanae in Engler's Botanisches Fahrbuch, vol. XVII, p. 48. 


41 


Page. Ligne. 
46 27 lire: fig. 64 au lieu de fig. 66. 
51 27 » D 259 D » » 185, 
74 17 » » 205 » » » 215. 
75 30 supprimer : (fig. 52). 
76 2 lire: fig. 166 au lieu de fig. 55. 
88 dernière ligne de la légende de la figure 50, lire : Cestichis au lieu de Cestorchis 
88 4 lire: conopsea au lieu de coneopsea. 
92 25 » comme chez au lieu de chez comme. 
92 30 » fig. 110 au lieu de fig. 90. 
07 14 » fig. 194bis » » fig. 194. 


09 1  »  bromélioïde. 

102 14 >»  Saccilabiées et non Saccolabiées. 

109 fig. 68 lire : sépale inférieur double. 

112 fig. 73 » vue latérale et apicale de l'extrémité. 
123 4 lire : fig. 228 au lieu de fig. 221. 


123 20 » fig. 82,6 » » fig. 82,e 

125 25 supprimer: (fig. 183). 

158 20 lire: herborisé et non botanisé. 

159 8 » fig. 180 au lieu de fig. 181. 

159 25 > fig. 203 » fig. 200. 

162 33 D ES TO » fig. 122. 

167 183 >» devient et non redevient. 

173 8 » présentent une grande généralité et se retrouvent... 

174 5 » il frotte des étamines sessiles à pollen visqueux et l'embouchure 
d'un grand stigmate. 

DÉTENU porter au lieu de montrer. 

ISA 02000 fig. 215 au lieu de fig. 251. 

191 37 sur au lieu de à. 

197 15 » Les extrémités des pétales et du long gynostème apparaissent par 
l'ouverture du vase... 

201 34 Chantinti et non Phantini. 


204 NTI 0 qu'ils ne touchent pas l'antenne. 

209 27 D Eulophia au lieu de Oeceoclades. 

20) 3500 polliniques. Ce dernier cas a été observé... 
221 16 »  Rodriguezia au lieu de Burlingtoniu. 

223 9 » celle au lieu de celui. 


224 17 le Macroplectrum sesquipedale. 

235 11 lire : Dauthieriet non Danthieri. 

236 10 ajouter après Hi1STORIQUE : — Les premières tentatives d'hybridation 
ont été indiquées par Herbert, le savant botaniste anglais(1), En 
1849, Moore, curateur du Jardin botanique de Glasnevin, annonce, 
dans le Gardeners’ Chronicle (2), l'obtention de graines d'Epiden- 
drum elongatum, E. crassifolium, Cattleya Forbesii et Phajus 
albus. En 1860, le docteur John Harris, d'Exeter, suggère à 
Dominy l’idée d'hybrider des genres entre eux... 

237 ajouter : Àux noms des semeurs cités, il convient d'ajouter pour la France : 


Page, Paul Darblay, Godefroy-Lebeuf; et pour la Belgique : 
Moens. 


(1) On Hybridisation among vegetables. Journ. Soc. Lin. Lond, Vol.Il PAIE 104. 
(2) On growing Orchids from Seeds. Année 1849, p. 549. 


d: tlénË 


21 


15 


. Ligne. 


ajouter : qu'il n'embrasse que par deux petites. 


» 


médicinaux. 

Fève Tonka. 

Lowianum. 

Trichopilia au lieu de Pilumna. 
fig. 248 et non 254. 


supprimer : D). 


» yubra et cordata. 
» Goodyera repens. 
» de ces régions. 


note 1, lire : Aceras longibracteata. 
note 3, lire : Orchis. 
lire : canariensis. 


» 


» 


A lui seul le Brésil compte plus de quatre-vingts espèces d'Hube- 
naria. 

la plus étendue … et non Le plus étendu. 

Annam. 

oblique. Des aisselles des feuilles. . 

et apparaissent en touffes latérales... 

du groupe des Fasciculées…. 

On. sphacelatum. 

et cependant à certaines heures du jour, sous les rayons du soleil, etc. 

gazonnants au lieu de voisins. 

Zygosepalum. 

Rio Pirapitinga. 


note, lire : Orchidiographische Bsiträge (in Linnaea, t. 41, p. 65) au lieu 


lire : 


» 


de Orchideae Roezlianae etc. 
Vrydagzynea. 
Ils sont insignifiants. 
ce genre au lieu de celte famille. 
Diuris. 
D. cernua ou prasinata. 
désignation au lieu de description. 


(2me colonne) ajoutez : Paphiopedium philippinense (Rchb. f.) Pfitz. 


lire : 


» 


— Pitcherianum Hort. Manda v. P. Argus 
(Rchb. f.) Pftz. 
fortes, mélangées de rocailles, exposées au levant ou au couchant... 
verticaux au lieu de perpendiculaires. 
Les châssis latéraux verticaux seront... 
qui s’amassent au lieu de contenues. 
hydrocarbonate au lieu de hydrocarburate. 
à un support. 


TABLE ALPHABÉTIQUE 


DES MATIÈRES, DES 310 VIGNETTES ET DES 31 CHROMOLITHOGRAPHIES. 


Les chiffres placés à droite des colonnes désignent les pages du texte: à gauche des 
colonnes, les chiffres ordinaires indiquent les vignettes(r) insérées dans le texte. 
et ceux en romain se rapportent aux 31 chromolithographies. 


5H. 
140. 
208. 

\'Æ 


Absence de parasitisme chez les 
Orchidées 


Ne 04 
116. Acanthephibhium javani- 


cu 125, 137, 151, 197 

. Acarus des Orchidéss. 574 
Acclimatation des Orchidées 318 

. Aceras anthropobhora. 80, 86, 144, 
284, 325 

Acineta Barkeri 161, 162, 187 
— superba . Las 102 
Acranthe (sympode) . . . . 63 
139. Ada aurantiaca. 157,166, 193, 
290, 291 

Addenda . ; 585 
Aération des serres 513 


Aerid’s, leur domaine + AR 
— mulliflorum. 72, 151, 306, 343 
— odoritum. 6,7, 92, 137, 306, 343 
— Vandarum. 75,125, 126, 151, 

154, 158, 160, 170, 195, 344 

Affinités des Flores Orchidéennes. 302 


Ailes . d'MMPARC TL ee 24 
Aire de dispersion des Orchidées 296 
Algues nuisibles 565 
Altitude, son influence 308 
Amateurs célèbres. 492 
Amis des Orchidées 580 
Anacamptis pyramidalis . 206, 325 
Angraecum caudatum 153 
— fastuosum 293 
— mMmodestuni. 


V. 


I8I. 


Angrascum Sanderianum. 

Anguloa, leur patrie. . . 377 
— Clowesii. + 199, 220, 230 

Anæctochilus, leur habitat. 366 


47E-F,212. — Reinwardtii. 148,176, 366 

43. Ansellia africana. . . 67 

239. — — V. CONLOENSiS 367 

Antennes des Catasetum . 122 
Antiquité classique (l'Orchidée 

aus) = 200 "ONE SANTREN 3 

178. Apostasia, leur diagramme. 39 

16. — Wallichi. 38 

Apostasiées . 37 

285. Araignée rouge. 574 

AITOMGES A Rs VE ae 526 

Auricules du gynostème. 126 

89. Batemania Colleyi 125, 160, 186 

BENTHAM, sa classification 245 

Bifrenaria, leur patrie . . 377 

134, 240 — Harrisoniae . 219, 230, 377 

287. Blatte. NE ET 575 

80. Bletilla hyacinthina . 73, 122, 280 

Bleuissement des fleursdePhajus 95 

186. Bollea coelestis. «213, 400 
Botanistes modernes . = 
Botauistes voyageurs et les im- 

PROS (Eee tete 26 
Bractées, leur rôle dans l'inflo- 

rescence . SE - 98 

33D. Brassavola Perrinii . 49 75 


(1) Nous croyons devoir rappeler ici la signification des lettres : 4) anthère: b) bursi- 
cule; n) lobes stigmatiques: x) staminodes; sm) sépale médian ou antérieur: sl) sépales 
latéraux: pm) pétale médian ou postérieur (labelle); pl) pétales latéraux; sp) éperon; 
she) entrée de l'éperon; c) gynostème; f) pied du gynostème, 


DOS 


Brassia, leur patrie . . . . 377 
117. — brachiata. 138, 147, 153, 182 
528,Cc. Bulbophyllum Carreyanum. 


153: 190 

520. M cyindraceue NE 0 
52e = MODS EE a e te 0 
44B. — #inulissimum. . , . 69 
44 As =" Odoar AVE." +. NON 65 
52€. — weliculatum . . : . 90 
145.  — Schmidtianum. 160 
Bursicule mL 0, 1,732, 169 
Calanthe, leur aire . . s 41 

22. — Veratrifolia. 45,72, 137, 147,344 
IV,124.— vestita . 147 


174. Calanthidium labrosunr. ; 186 
98. Culeana major 115, 128, 149, 153, 
167, 195 

209. Calypso boreulis 88, 147, 174, 296, 
302, 304, 322 

278. Camaria. . à -0508 
Cantonnement des Onde 
Capitule des Orchidées . . . 98 


204-1CATAbE AOrE. NRC T2 
CASQUE 23 
XIII. Catasetum fimbriatum v. fissum. 
BE UT AMINAIUIH UT 22 0123 
171, 172.— tridentatum. 8, 40, 167, 203 
Cattleya, leur patrie . . , . 386 
191. — Acklandiae. 2171 299, 390 
245 — Alexandrae. + à + “386 
246. — citrina . 91, 386, 391 
190. — guttatav. Prinzit. .217, 390 
119. — intlermedin . . 140, 178, 390 
247.  — labiata. 137,218,291,304,358, 
387 
120, — — v. Mendelii. 142, 201, 388 
374A-C. — — v. Mossiae 230,278,291,388 
248. — — v,Trianae . . 291, 388 
X. ——v Warneri. . . 230 
TS RER NE Te ETS 
36. — Victoria Regina 51, 390 
XXXI. — Walkeriana. 
X: — Warneri. 230 


Caudicule -. 25 
Causes qui influent sur le déve- 


loppement de l'Orchidée . 310 
Cephalanthera, leur domaine 386 
1554 — grandiflora. 140, 175, 230 
185. — pallens . + + 207,210 
50 c-E, G. Cestichis pendula . 97, 194 
134. Chaenanthe Barkeri. 151,154, 170 
107E. Chamaeorchis alpina . Ge Hire 
Champignons microscopiques 566 
Charancons RCE RER 579 
Chauffage des serres . , . 520 
Choix des espèces à cultiver. 498 


51. Chrysoglossum villosum . . 80 


Chysis, leur aire . . 346 

162. — bractescens . Gas 67, de 182, 
À 230, 299 

292.  —ICHISOM. LOC 7 


Cireuse (pollinie) .. . . . . 135 

97. Cirrhaea dependens . 127, 152, 162 

52F, G. Cirrhopetalum Cumingit 89,191 
Cladodes des racines. . . . 8 

275, 276. Cladosporium orchidearum 566 

Classification des Orchidées. . 241 

Cleistogames (fleurs) . . . . 211 

Clinandrinm . . . 11708 


290. Cloportes CRE 
295. Coccinelles,. CURE 
283. /COCCUS :. 1. ©: e SOC 
283. (Cochenille.; 2 RE 
767-1. Cochlioda sanguinea . . « 118 
XXIII. — vulcanica. 
107 A. Coeloglossum viride . . . 134 
Coelogyne, leur domaine. . +. 339 
XIX, 207. — cristata . . . .288,339 
58. — Cunringii .- . 89,98, 178 
299. — D'AVANCE 
213, 226. — oOcellatav.maxima. . 339 
S8E,F. 0 —"Speciosa LL. ee 
Collections d'Orchidées culti- 
VÉES AS MES VS ER 289 
Colonne. . SR 


Coloration des feuilles RL 55 
Golons des eut 0 212 

143. Comparettia falcata . . . 159 
77. — tacroplectron 122, 152, 197 
SE. Comperia faurica.. : 00e 
Compost". Se 
Conditions variables de la culture 494 

48. Condupliquée (préfoliation). . 81 
Confins des régions chaudes de 
l'hémisphère boréal . . . 

48bis, Convolutée (préfoliation) . . 81 
Coralloïde (rhizome) . . . . 66 
262. Corbeille à Orchidée. . . . 530 
82. Coryanthes maculata. 123, 148, 152, 
162, 192,210 

138. Corymbis veratrifolia. 156, 164, 194 
31. Corysanthes picta. 48, 79, 149, 153, 


159, 197 

293. Crapaud. . . 580 
35K. Cryptophoranthus atropurbureus 

163, 189 

17S — Dayanus. . . 150, 165, 190 

Culture des Orchidées . . . 487 

— rationnelle des Orchidées. 491 

— sur blocs ou sur bûches . 528 

— dans les pays tropicaux . 552 

— enpaniers . . + . «. 529 

—1C0 DOS Ce Le OR REUTRIE 


155,183. Cycnoches ventricosum. 40, 164, 


185, 204 

Cymbidium, leur habitat. . . 357 
234. — churneum ... . . . 357 
41A-C. — giganteum . 181, 357 
161. — Lowianum. , 181,225, 357 
108E. Cynosorchis fastigiata. . +. 134 


41D,E, Cyperorchis elegans . . . 64 
Cypripédinées, élévation relative 35 
— CAMES, es ee ce 


Cypripédinées, feuilles. . . 73 | Durée des inflorescences . . . 102 
— fleur . . . =) SE E7E — de la vie de certaines Orchi- 
— liaison avec les A postasiées 36 dées. : = 495 
— modificationsdeleursfleurs 107 — du repos chez les Orchidées 554 
— pollinisation. . . . . 200 
Cypripedium, leur domaine. . 331 | Eau pour l'arrosage . . . . 539 
RE ICT OVAEC Se ee 032 Élévation relative des Cypripé- 
134. — arietinutm. 32, 74, 108, 109, | dimées. . : RE EE | 
305, 332 | — — des Monocoty lédones. 22 
XVI. — Argus. | 59. Elleanthus Caravata. . . 98, 197 
224. — Calceolus . . . .326, 332 Emballage desfleursd'Orchidées 293 
III. — Dauthieri v. marmoratum. 277. Embia . . : + 567 
VIII. — Godefroyae v. Mariae. | Embryogénie de Dies s. .« #27 
13B. — japonicum. 31, 74, 108, 109, | 197. Embryon des Orchidées. . . 228 
149, 332, 334 EngTais en + «à + « ‘540 
225. — spectabile. . . 278, 306, 333 Énigme antique. . . . . . I 
87e. Cyrtopodium Andersoni.125,159,182 | Ennemis des Orchidées . . . 565 
103c. Cystorchis javanica. . . . 131 Épi des Orchidées. . . . . 97 
Epichiitme  - - “AU TO 
Décoration de la serre. . . 519 Epidendrum, leur domaine EDR 
Défense préventive contre les | 8r. — ciliare. 6,122, 159, 168, 178, 
ES re See ter 0 Le 9 SON] 346 
Dendrobium, leur domaine . . 359 | 37E. — cnemidophorum . . . 63 
159. — Brymerianum 178,211,220,362 | 261. — Medusae. . . . . . 528 
64, 193.— Dalhousieanum . .219, 364 | 37D. — nemorale. . . . . . 51 
64. — densiflorum. . - . . 362 | 37F,G. — pygmaeum . … . . . 58 
XX. — — v. albo-luteum. 231. — Sétamfordianum . . 314, 346 
238. — Farmeri. . . . . . 362 | 1758., Epipactis palusiris. . .175, 322 
160. — fimbriatum. . . . . 362 Épiphytes . . = hp 
237. — formosum . . . . * 362 | 38. Epipogon aphyllus a SSs 66, 81, 86 
132,133.— #0bile 70,95,151,224,292,310 Époque du repos des Orchidées . 555 
360,364 | Équitante (feuille). . . . . 82 
236. — — v. Cooksonianum 360,364 | go. Eriopsis rutidobulbon 72, 125, 159, 
XX. — thyrsiflorum Hort. | 181 
Desiderata . . . F7 BrEUAE 0-0 sh 1e) 505 
152. Diacrium bicornutum ‘68, sh 299 | Erreurs d'antan dans la culture. 488 
Diagnose des Orchidées . , 39 Esmeralda, leur patrie . . . 355 
178. Diagramme des Apostasia . . 39 | 214,8 — Cathcartii . . .355, 356 
15. — des Cypripédinées. . . 35 | 214,233. — Sanderiana . . .317,355 
3. — du Fritillaria + - …. . 22 Espèces à aire disjointe . . . 306 
4. — du Leucoium verum . . 22 | État hygrométrique de l'air, son 
xZA. — des Neuwiedia . … . 39 influence. . . + 314 
11. — des Orchidées monandres. 28 | Étendue de l’aire de dispersion 
19. Dichaea vaginata. . . . 44, 97 | des diverstypes. . FRE: 
Difficultés de l'étude de la géo- Étymologie du nom Orchidées RAT 
graphie botanique des Orchi- 
dées . . RP Te à 2090 | Fécondation des Orchidées . . 140 
Diphylles (bulbes). 0 — directedel'Ophrysapifera 208 
Direction des inflorescences. . 102 | — sous quatre formes. . . 209 
Disa, leur patrie . . . . . 409 | Feuille charnue des Orchidées 
I21A-C.— grandiflora. 5, 148, 149, 157 | ACEOIONESSEE NP EM CON EUTE 
312, 410 — clivioïde. . Ne 
121D. — MEgAGeras . . + =. 146, 190 — des Cypripédinées 7: 
Disque" . 11393 LOE — des Orchidées … . + . 71 
Dissémination des gratte ART 228 _— des OrCHIS = 7 - - 1-80 
100. Diuris elongata 129, 149, 154, 198 | —— équitinte. NM. - /2 + -,- 82 
Division des pieds d'Orchidées . 560 | — forme spéciale. . . .  8I 
474A-8. Dossinia marmorata 73, 79, 130 EC 
PRE ES Jan 542 — vernation . . V0 BE 
48. Duplicative (préfoliation) . . 81 Figures, signification des lettres 121, 
Duplicature des fleurs. . . . 226 589 


Durée des fleurs . . . . . 224 Fleur à grands sépales . , . 190 


Fleur'a sabot nc Creer 
— de forme spéciale. . . 104 
— des Cypripédinées. 31 
— des Orchidées . . . 104 
— — — diandres , . 107 
— — — monandres. . 32, 113 
— — — emballage . 293 
— — — valeur commerciale. 290 
— en casque . 174 
— enentonnoir . 177 
— ériopside. . 181 
— pleurothallidienne, 187 
—_— SCAPhVLIOHC NE NN TT ED 
— toujours fermées 211 
— type des Monocotylédones. 19 
Flore orchidéenne fossile. 242 
288. Forficule. 576 
Formes des fleurs Ce les Orchi- 
dés TE 172 
Fossiles (Oridee)e 241 
Fourmis. 579 
1,3. Fritillaria imberialis, sa à fleur. 21 
193. Fruit des Orchidées 229 
1184-8. Galeandra Devoniana . 139, 180 
155bis, — nivalis. 180 
29. Galeola altissima. 47, 65 
235. GAMASUS LelarEUs UN NET 
Genres à aire disjointe 305 
— tableau pour leur déter- 
HUNAHONS. M ZE 
87D. Gcodorum fucatum 123 
Géographie botanique des Oréhi- 
dées , . er 296 
289. Géophile longicorne 2 c 576 
199. Germination des Orchidées . 231 
1508. Glossodia Brunonis. 163 
I5OD. — 1H4j0r 163 
ISOC  — #20" 163 
55E. Gomeza planifolia 182 
259 Gongora galeata . . 51 
92 — tricolor a nn 152, 193 
47C. Goodyera . . A ÉSOME 
257ter. Gouttière Het pour ther- 
mosiphon . : US 25 
87F,G. Govenia liliacesr2s, 151, 160, 186, 
278 
Gradation des caractères de la 
fleur chez les Orchidées mo- 
NANTES SE Ne D GG HE 
Graine des Orchidées. 10228 
41G H,112. Grammangis Ellisis. 137,299 


217. Gramimatophyllum Fenzlianum 


v.Measuresianum. 313 

ARE, UE. — SPCCIOSUIR LE, We. 64 
Grappe des Orchidées. 96, 99 
Grappe de corymbe : 938 

109. Gymnadenia conopsea re 338 


Gynostème . . 
— cattleyien . 
— ophrydien . 
— pterostylidien . 


ANT Tr 70 
115 17, L09 
115,132, 169 
115,127, 169 


Habenaria, leur aire. . . 336 
108A-D. — Bonaiea. . . , . . 135 
102. Haemaria discolor 124,131,153,162 

45. — — v. Dawsontana. . 73, 79 

VI, 50. — — v. Denisoniana. 
Hampe florale, ses rapports avec 
latige ordinaire. . . 


99 
= DIOÏNÈTE UE ONE 103 
Harpotropisme. , . . 92 
56E-G. Helcia sanguinolenta . 122 


1078-D. Herminium monorchis . 87, 116, 
134, 338 
Hétéroblastiques (pseudo-bulbes) 67 
5 D. Himantoglossum hircinum. 144,195, 
282, 325 

Historique de la culture des 


Orchidées :.\ 0 CE 
— de l’hybridation . 236, 586 
Homoblastiques (pseudo- bulbes) 67 
194bis, Houlletia odoratissima 97, 221 
XXV. — — v. antioquiensis. 
Humidité, influence de sa répar- 
FIHON TEE : 316 


— atmosphérique dans a serre 518 
122. Hutionaea pulchra 146, 148, 154, 197 


Hybridation des Orchidées . 234 

Hybrides artificiels 236 

— bigénériques + 739 

— (liste des principaux) . 465 

—_nattrels ee * 211, 294 

— (nomenclature des) . , 240 

— spécifiques . |. AC 

Hypocbilium 2° 7 CN 

Importations F 545 

leur valeur ONE 
Indifférence des Orchidées épi- 

phytes pour leur support . 94 

Inflorescences des Orchidées 96 

— leur direction 102 

— leur durée . . . 102 

Influence de l'altitude . 308 

Insectes nuisibles . . . 507 

— — moyens préventifs. 07 

= utiles MA ET ARS 581 

Imsecticides TM CESR EN) 

THÉTOAUCUHONM EEE I 

62c. Tone paleacea . . 153, TOI 

467. ZTonopsis paniculata . . . + 76 

60. Isochilus linearis. 99, 1571 166, 

193, 300 

295. ARETMÉS. NU. Dee 572 

Babellée tr «< 23, 142 


— accentuant M2: différen- 
ciation du périanthe . 155 
— des Cypripédinées. 110 
Laelia, leur patrie. 386 
33H. — acuminala LL 297 
249. — ancepsv. Ashworthiuna . 292 
195, — autummalis, . 221,277: 292 


DEN 


33 8, c. Laelia Digbyana . . 
33 4. — furfuracea . . 
33D,F,G. — Perrinii 
XXI. — porphyritis. 
IE, 250. — purpuraïa. . . .230, 397 
Lavage des feuilles . . . . 542 
Légendes orientales . . . . 2 
35N,0. Lepanthes Calodictyon . . 55 
142. Leptotes bicolor . . 159,184, 229 
2,4. Leucoium vernum. . . +. . 21 
Liaison des Cypripédinées avec 
les Apostasiées . . . . . 36 
220. Lignes isothermes. . . . . 
RES DIRES LUE re 
126. Limatodes rosea . 147, 153, 181 
Limbes cordiformes ou aroïdes. 79 
Limitesaltitudinales du domaine 


. 178, 388 


51: 75 
68, 137, 230 


orchidéen . . 300 
Limites du groupe orchidéen 1639 
155C,D. Limodorum abortivum . . 175 
LiNpzey et sa classification . 9, 244 


LiNné. (Orchidées décrites par). 5 


Liparis, leur domaine . . . 329 

222. — Loeselit . . - 304 329 

878,c. Lissochilus Horsfallii ROLE DE 

Liste des Orchidées cultivées . 413 

— — hybrides . 465 

2. Listera ovata . 65, 84, 97, 130, 175 

206, 325 

140. Listrostachys caudaia 158 

25. Lockhartia lunifera . . . 46, 98 

Lombrics. - "+ - «+ 576 
Lumière, influence de son ia- 

RE met Rise Jia 

— dans les serres . . . . 510 

Lycaste, leur patrie . . DRE 

7D-F. — macrophylla. . ee 51, 98 

196. — Skinneri. 225, 291, 202, 378 


XXX. — — v. delicatissima. 
VE 40, 47D. Macodes petola . . .2, 73 
Maçonneries des serres . COL 
18. Macroplectrum sesquipedale 43, 56 
2, 09; 158, 220, 224, 230 
Maladies des Orchidées . - 54 
221, 221bis. Malaxis paludosa 195, 304, 
Manteau. . . EN n- 


Marcottage des Orchidées NS 
Masdevallia, leur patrie. 2 392 

176. — caudaiav. Shutileworthii 165 
35H,1. — Estradae. . . . . 187,188 
176bis, — Schlimii. . . - 187, 188 
34. — triarisiella . . . . 50, 75 
153. — Veitchiana . . 165, 217 
Masse adhésive. «25, 118, 170 
Matériaux de culture. . . . 523 

— — — à proscrire. 527 
Maturation des fruits. . . . 230 
Maxillaria, leur patrie . . 379 


24€. — graminifolia . . . . 63 
24F. — f#ridifolia . . . 45 75 
24G. — marginal . . . . 47 


2 — 


2 


244. Maxillaria setigera. . . . 47 


24D. — variabilis . . . . . 47 
66a-5. Megaclinium maximum . 99,153, 
160, 191 

Men "te Le CRE 
Mesochilium . . 161 


XXIII. Mesospinidium vulcanicurm. 
Métis. « ©: Un lent PAYER 
504. Microstylis discolor PRE CAL ;, 


50B, F. — versicol0r . . . . . 195 
XXIV. Maltonia Leopoldiana. 
XXIX, 165. — sfectabilis. . . . x182 
Monocotylédones, leur élévation 
relative . . EC 


— type de leur Hour sat e NIET) 
Monophylles (bulbes) . . . 70 

184. Mormodes igneum . . . . 204 
228. — Ocannae. . : UE 
Moyen âge (l'Orchidée au) . . 4 
Multiplication des Orchidées . 
MyYCORESS 3 20012.» 8e 

280. Myriapodes_ . . 576 
20. Mysfacidium distichum = 44. F 167 


211. Neogyne Gardneriana . . 122, 340 
101. Neottia Nidus-avis. 55, 85, 130, 175, 


325 

Nervation réticulée des Anœcto- 
RUES. > 2277 0 à 79 
30. Nervilia Catwicaus =. 48,79 


174. Neuwiedia, diagramme . . . 39 
107r. Nigriftella angustifolia. . . 
Nombre des fleurs. . . . 
des prnes 7520-00 7 230 
Nomenclature des hybrides. . 240 
Noms populaires des Orchidées. 277 


46x. Notylia bicolor. . . . . . 76 

83. — bipartita. .123, 133, 156, 194 
23r. Oberonia acaulis . . . . . 75 
23A-E. — $ridifolia . . . . . 46 


35c,D. Octomeria . À 8, 165, 188 
Odontoglossum, leur patrie. . 379 
Lie cirrhosu. He A 
236, 243. Odontoglossum coronarium 182 
VII, 554-Cc, 188, 189 Odontoglossum 
crispum. 96, 212, 216, 290, 292 
XVII. Odontoglossum grande v. ex- 


COST, TE EE SRNREEC 7e 
242. — nebulosum . . . . 289 
552. RMS et 25, 0008 
XIV, 265. — — v.majus. 292 


187,187bis — friumphans. . 
Ombelle des Orchidées . , . 98 
Ombrage des serres . . . . 512 


Oncidium, leur patrie . . . 382 
244 — barbatum . . . . . 386 
464,8. — Cavendishianum . . 76,184 
46F,G. — Cebollda. .- . . . 75,76 
167. — Forbesii. . . . .184,292 
XXVI. — Yonesianum. 
300, — Kramerianum,. . . . 528 


42 


nt LE rx 


168. Oncidium Lanceanum . . . 184 
XV. — leopardinum 

169. — oynithocephalum . . 40, 184 
166. — Papilio. 8,76, 184, 230, 384 


4A6E.: — siluestre .. . 2"...  g6 
XXII. — splendidum 


XXII. — figrinum v. splendidum 277 
46c, D. — ériquetrum . . . . . 76 
215. — Varicosum v. ROgersit. 97, 103, 
291, 384 

Ophrys, leur domaine. 330 


— Avachnites. 116, 132 325, 331 


104. 

105 — avanijera 132, 230, 325, 331 
223. . — Scolopax, . . . . 331 
Orchidées acrotones . . 116,169 
— de l'Afrique tropicale. . 367 
— allemandes 327 
— alpines européennes . 2 502 
— anglaises, 326 

— de l'Asie tropicale et insu- 
lairene 343 

— australiennes de la zone 
douce australe . . . 409 
— basitones 116, 133, 169 
— du bassin méditerranéen . 328 
ete bidons 150-2007 260 
— chinoises et japonaises . 337 

— cultivées; index synony- 
mique + . é 413 
— dans les sal6ns "OCR 2S8 
— et le dessin décoratif . 279 
— diandres. . 106 


— épiphytes, indifférence 
pour leur support . . 94 


— européennes. . . 324 
— exotiques; les premières 
connues . . : 5 
— à feuillage ornemental ne GE 
— françaises D 20 
"hybrides liste. MM MIOUABE 
— importées … . … © 545 
— indigènes belges . 325 
— des îles de la Mélanésie . 403 
— monandres. 22, 28, 113 
— néo-calédoniennes. 402 
— nord-américaines . . ,. 324 
— nord-australiennes . . 358 
— de la Nouvelle-Guinée 358 
— de pleine terre. 500 
— enserre; leur culture. 502 
— tropicales américaines . 370 
8, 9. Orchis, leur domaine. . . 330 
106. — Jatifolia. 81, 325 
5SA-C. — 1##4culata. 245 81, Han 148, 
230, 325 


24B,C. Ornithidium densum. . . 98 


79. Ornithocephalus grandiflorus. 122, 
163 

Ovaire des Orchidées. . , . 166 

262. Paniers pour la culture . . . 529 
7 G H,144. Pablhuinia cristatu . 160, 182 


13F. Paphiopedium, leur domaine . 
XVI,-67,69. — Argus _« 
12,144-C, 73. — barbalum 


394 
. 107, 109 
+ 31, 33, 109, 
149, 238, 292 


192 — bellatulime Ce Sr 
DO. = VCAUOSU TEEN 2 TE 
7I. — caudatluim . . 109, 220, 313 
13C. — concolor . + 44: 743 109 
III. — Dauthieri v. marmoratum. 
219. . — Elliottianum . . . . xxo 
VIII. — Godefroyae v. Marine. 

218. - — LYANAE UNE 109 


205,245.—Harrisianum .74, 236, 238 


230. . — Ho0kerae :.. OS 
14D,260.—#nsigne - 33, 238, 2890, 20% 
70. — Lawrenceanum . 109, 292 
182. — Leeanum . 201, 292 
130. — longifolium. . . . 74,110 
272.  — Marshallianum 550 
251. — œ@nanthumv.superbum.238,399 
229. — philippinsnse . . . . 396 
74.  — villosum. 238, 292, 396 
66. — — v. Boxalli atratum.107,109 
292 

Parfums des fleurs. . . . .212 
Patrie des Orchidées . 320, AIX 
Périanthe des Orchidées. . +. I40 

— peu différencié. . . . 163 


04. Peristeria elata.69,127,220,230,278 
148. — pendula . . 161, 162 
113,175. Pescatorea Klabochorum 187,400 


PFITZER, sa classification . . 246 

— tableau de ses genres. 255 

— — desestribus . 250 

85. Phajus Blumei. 125,158, 186, 209 

TON EN CU PTE USENET Re 117 

XXVIII,252.— Humblotii . . . 405 

27. — Tankervillae . 471 319 
XVIII. — tuberculosus. 

Phalaenopbsis, leur patrie 365 


— amabilis. 8,156, 214, 230, 292, 


365 
21C-F,54.— Schilleriana.45, 92, 138, 214, 


137. 


224, 230, 292, 305 

39. — Stuartiana. 91, 156, 160, 292, 

365 

149. Pholidota articulata . . 162, 184 

35M. Physosiphon Loddigesit. . 165, 189 

VI, 20. Physurus pictus. 

VI,30% — — v. argenteus. 

Pièces accessoires du périanthe. 163 


Pied de la colonne. .26, 125, 169 
Place des Orchidées dans la 
CIASSIACAION EN AT 


Plantes établies 02 00 C7) 
— remarquables . . . +. 493 
Platanthera, leur domiine . . 336 


123 — montana.148,158,175, 176, 325 


Plateau 0: + (RÉ ORIOE 
63. Platyclinis glumacea. 99, 102, 185 
Pleione, leur aire." TO 


156,227, — huinilis . « 178, 3401 352 


s88-D. Pleione lagenaria . . 
408-D. Pleuranthe n FL NE 
Pleuridies . . aie 

Pleurothallis cardium REC 


35E- 
35F. — velaticaulis 149 
Pluies, leur influence . 314 
Pneumatodes . , D IOZ 
26. Podochilus seal pellifarmis SAS CA 
Poillinarium. . . RE 120 

— gradation dans sa compli- 

cation . 0230 
Pollinies. . 25, 118, 135 
200. — attachées à un n crayon . 236 
Pollinisation des Orchidées . 199 


Polyphylles (bulbes) . . . . 70 
21H,1. Polyrrhiza funalis. 48, 55, 93, 139 
118c. Polystachya bracteosa . 151 
136. Ponthieva maculata . 154,167,199 

Post des Orchidées... 25 #4 
263, 264. Pots pour la culture. . 529, 531 
284. Pou blanc SE 

Précurseurs dans la culture ra- 


tionnelle des Orchidées 490 
48. Préfoliation condupliquéz . , 81 
aSbis, — convolutée. . . SADES 
Premières introductions d'Or, 
CHIdÉES Ne 6 
Premières Orchidées exotiques 
connues , . 5 
Premiers essais de culture d:s 
Orchidées À he 
124. Preptanthe vestita. . 147,29 
IV. — — v. grandiflora. 


Principes généraux de la culture 494 
Principes immédiats des Orchi- 


dés. 95 
Produits notice des Orchi- 
dées . . 281 
Produits médicinaux des Orchidées 282 
Propreté. SH Let. 6530 
Pseudo-bulbes, . . 66 
6. Pterostylis. 23 ins, 145 176 
Pucerons . : 572 
Palvérulente (pollinie) . 136 
Racines . . 83 
—- aériennes des Orchidées 
épiphytes 0" ct -71089 
— du Listeraovata . . . 84 


— de l'Orchis militaris . . 86 
— des Phalaenopsis . , . 92 
— des Vanilles . . 93 
— leursensibilitéà la lumière 94 
. Raïnette verte . . 

Rajeunissement des Orchidées . 
Ramification des Orchidées. . 61 
Rareté de certaines Orchidées . 
Récolte des Orchidées . . ,. 
Réduction de la région limbaire 
RAR TEMUER "74 

— relative de l'appareil 
LICE Us ce 1.83 


REICHENBACH, sa classification. 


Remapohige ©... ve 
Renanthera coccinea 


245 
532 
+ 154: 1571: 335: 
; 356 
1,164. — Lowii . 40, 72, 182, 356 
Répartition des espèces dans les 


135. 


diverses parties du monde 302 
— des Orchidées épiphytes 
et terricoles . «< 299 
— horticole des Orchidées. 499 
Repos chez les Orchidées 


Ressemblances physiologiques 
desOrchidées avec les pe 
grasses . . - 04 


35G, 177. Restrepia antennifera . 50, 75: 
150, 188 

Rétinacle . . PC IIS 
Rhizome des Orchidées Ses 0 108 
—LéMpRYIE,, 4 = els #89 

— rampant. , sue 89 
Rhynchostylis, leur patrie RE D 

235- — cæœlestis . a 353 
464. Rodriguezia decora . . . 51, 184 
170. — venusta . IR KE : 
Rostellum . . . 25. 105, IIS 

111. Saccolabium giganteum. . 137, 139 
206. — Hendersonianum . . 288 
180. Saiyrium nepalense . 159, 167, 194 
35L. Scaphosepalum verrucosum. 77, 189 
173. Scaphyglottis violacea 92, 186 
179, 204. Schlimia trifida 69, 150, 192 


203. Schomburgkia tibicinis 69, 159, 275 
32. Scuticaria Steelei 49, 75, 89,137, 139 
Sectiie (pollinie) . 136 


13G. S:lentpedium, leur ovaire . . 34 
Semis. = 563 
Sensibilité des : racines à ‘la lu- 

HHBEE AS LC 

5F,G. Serapias cordigera x late 23 

SREINDARES Eee ee Cela 


253. Serre à Orchidées. . . 504 
XII, 157. Sobralia macrantha 178, 218, 228 


264. — Var. H4ANG . . . . 532 
Sociabilité des Orchidées . 316, 544 
Sophronitis, leur habitat. 400 

Do CERN 2 NULS 053 

I4I. — violacea . 159 

216. Spathoglottis aurea 99, 182 
Sphagnum ; 525 
Spiranthes, leur domaine “APRES 

GI. — aestivalis = 323 

VI1o — Esmeralda . . . . 73 
Staminode 26, 126, 171 
Stanhopea, leur patrie 378 

129B-D. — Oculata . 230 

1294. — plaiyceras. . 148, 162 

XI. — Ruckeri. 


130,147. — Wardii. 148, 161, 193 
125. Stanhobeastrum ecornutum. 147, 196 
296, 297. Staphylin odorant . . . 582 

SÉCHCeS 0, à 3, à 200120, 57 


— 596 — 


354,8. Sielis. + 59, 759 97: 189 

123. Séenia pallida . A T7 E02 
Stigmate des Orchidées , . 

Structure dela feuille des Orchi- 

SE oc Lo 

Structure des feuilles charnues 7] 


115 


222. Sturimia Loeselii … 3041 325: 329 
SIVLE ER RE . 120, 169 

Suc des Orchidées: son utilisa- 
tion . 280 
Surfaçage 527 


10.19YmpOUes EE k po (OS 


Tableau de la classification de 


Bentham 246 

ee Lindley 244 

— — — — — Pfitzer 249 

_— — — — — Reichenbach 245 
Tableau pour la détermination 

des genres. 255 

— — — — des tribus . 250 


96. Telipogon 127, 164, 194 
Température, influence de sa 


constance . 311 
— des serres 0-502,507 
298. Terrine-support pour les Orchi- 
GÉES 5 © : 534 
84. Thecostele Zollingeri. . 124, 196 
994. Thelymitra ixioides . . 164, 194 
99B. — javanica . 129 
282. Thrips SIT 
28. Thunia Marshalliana es 98, 122, 
1371 179 
Digedes OrcChHIACES EN EE 
Traitement desOrchidées impor- 
tées. : Ne RAS 
— — — pendant Te repos RoRTE 
Tribus, tableau pour leur déter- 
mination . . . Rs 250 
95. Trichocentrum albo-purpureum. 127, 
184 
154. Trichopilia fragrans. . 167, 209 
50A,B. — 1Hayginata . . . . 98,122 
158. — SUaVIs 94, 178 
SOC, D ENT IUIS ES Er Ce 98 
57. Tropidia pedunculata . . . 98 
Tubercules aquifères. . . . 66 
— des Orchidées indigènes. 61 
NCIRITÉS RE NS NE O7 
— SOuUtETEANS ee De O7 
Tuteurage TONER + 543 
257. Tuÿau-gouttière . . . 522 


255. Tuyaux à ailettes . . , 522 

256, 258. Tuyaux des thermosiphons. 521 

257bis. — — dansune gouttière 522 

Usages des feuilles . : 283 

— industriels des Orchidées. 275 

— sacrés des Orchidées . 276 

Utilité des Orchidées Se 

Valeur commerciale des fleurs 

d'Orchidées . ‘ 1200 

— des importations . . . 551 

V'anda, leur patrie 353 

ST LU CŒVUIER Re 2T3) 314) 340: 354 
XXVII.— suavis. 

21G,  — beves : . 46, 58, 353 

127. — tricolor.147,156, 174, 317, 354 


114. Vandopsis lissochiloides. 138 
201, 202. Vanilla PERARSS 179,229,284 


Vanille 284 
231. Vaporisateur à nicotine . 570 
Variabilité des Orchidées . 318 
Velamen. . . NOT 
254, 254bis, Ventilateur à air chaud 515 
Vernation des feuilles. . . +. ‘81 
Vitrage des serres . 1e 510 
Vogue des Orchidées. . . , 294 
1034. Vrydagzynea gracilis. 132 
Vulgarisateurs des Orchidées . 14 
163. Wavrvea tyicolor . . + “82 


7a-c Xylobium pallidiflorum. 62, 63, 66, 


89, 100 
279, 280. Xyloborus perforans 568 
103D-F. Zeuxine inlegerrima 131 
Zone chaude australe . 402 
— — boréale 340 
— froide boréale . ‘0222 
— tempérée boréale 0523 
— tropicale. 347; 400 
Zygomorphie . . . 02/7 
— du périanthe; causes ‘qui 
l'accentuent . 145 
Zygopetalum, leur patrie 399 
IX, 267. — crinitum . 289 
91, 91bis, 273. Zygopetalum Mackayi 
125, 289 
274. Zygopetalum xanthinum 399 


78. Zygostates cornuta. 122, 127; 103, 
171, 196. 


TABLE ANALYTIQUE DES MATIÈRES. 


INTRODUCTION. 
Énigme antique. — Légendes orientales. — L'Orchidée dans l'antiquité classique. — 
L'Orchidée au moyen âge. — Premières Orchidées exotiques connues. — Premières 


introductions d'Orchidées. — Les Orchidées et les botanistes modernes. — Les 
vulgarisateurs. — Les botanistes voyageurs et les importations. — Desiderata. 


1à 17 
PREMIÈRE PARTIE. 
L'ORCHIDÉE, SA STRUCTURE ET SON ORGANISATION. 
CHAPITRE I. 


DÉFINITION DES ORCHIDÉES,. 


apports des Orchidées avec les atres monocotylédones. — Diignose des Orchidées. — 


Leur place dans la classification. — Étymologie. 19 à 42 
CHAPITRE Il. 
PORT DES ORCHIDÉES. 43à 55 
CHAPITRE III. 
LA TIGE. 
Sa croissance et sa ramification, — Les rhizomes. — Les tubercules aquifères ou pseudo- 
bulbes. — Les tubercules souterrains. 56 à 70 


CHAPITRES IV ET V. 


LA FEUILLE. 


Forme fondamentale de la feuille. — La feuille des Cypripédinées. — La feuille charnue 
chez les Orchidées acrotones. — La feuille clivioïde. — Les limbes cordiformes ou 
aroïdes. — Nervation réticulée des Anœctochiles et leur coloration. — Feuilles des 


Orchis. — Écailles incolores. — Vernation des feuilles . . . . . . ‘71 à 82 


CHAPITRE VI. 
LES RACINES. 


Réduction de l'appareil radical, — Racines du Listera ovata. — Appareil radical de 
l'Orchis militaris. — Cladodes de racines ou tubercules souterrains. — Tubercules 
digités. — Orchidées à rhizome rampant sur le sol, — Rhizomes épiphytes: racines 
aériennes, — Racines chez les Phalaenopsis, Aerides, etc. — Appareil radical des 
Vanilles. — Les Pneumatodes. — Sensibilité des racines à la lumière. — Indiffé- 
rence des Orchidées épiphytes pour leur support . . . . . . . . ,. 83 à 94 


CHAPITRE VII. 
PRINCIPES IMMÉDIATS DES ORCHIDÉES 4, . . . . 95 


CHAPITRE VIII. 
PES LIN EL OMRESICENCES: 


Grappes simples et grappes composées. — Épi. — Ombelle, — Rôle des bractées 
dans l'inflorescence. — Formes spéciales de la grappe. — Rapport de la hampe 
florale avec les tiges ordinaires. — Direction des inflorescences. — Durée de 
l'inflorescence, — Nombre des fleurs, — Hampes prolifères,. . . . . 96 à 103 


CHAPITRE IX. 
FLEUR DES ORCHIDÉES. 


Caractères généraux de la fleur des Orchidées. — Modifications qui accentuent les 
caractères de la fleur des Cypripédinées et en particulier sa zygomorphie. — Étude 
spéciale des diverses parties de la fleur des Orchidézs monandres. — Le gynostème; 
les trois dispositifs principaux du gynostème : dispositif cattleyen, ptérostylidien et 
ophrydien. — Les pollinies. — Le périanthe : État moyen du périanthe considéré 
dans son ensemble, Modifications du sépale médian, des sépales latéraux, des pétales 
latéraux et du labelle qui accentuent la différenciation du périanthe. Différenciation du 
périanthe par des pièces accessoires. Disparition de la différenciation des pièces du 


périanthe. — Ovaire. — Gradation des caractères de la fleur chez les Orchidées 
monandres, — Formes des fleurs chez les Orchidées. — Pollinisation des Orchidées. 
— La fécondation croisée est la règle. — Pollinisation des Cypripédinées, des 


Cattleya, des Dendrobium, des Catasetum, de l'Orchis, de l’Anacamptis, du Lastera, 
du Cephalanthera, etc. — Fécondation directe. — Fleurs des Coryanthes et Crypto- 
phoranthus. — Fleurs toujours fermées. — Hybrides naturels. — Parfums et coloris 
des fleurs. — Durée des fleurs. — Duplicature. . . . . . . . . 104 à 226 


CHAPITRE X. 
LA GRAINE. — LE FRUIT. 


Embryogénie des Orchidées. — Variété des types de développement. — La graine. — 
Le fruil +. à à me RL SR ET NS RER ES PL EE 


CHAPITRE XI. 
LA GERMINATION DES ORCHIDÉES . . . . 231 à 233 


TOR 


CHAPITRE XII. 
HYBRIDATION DES ORCHIDÉES. 


Hybridation naturelle et artificielle. — Historique. — Hybrides spécifiques. — Métis. — 
Hybrides bigénériques. — Nomenclature des hybrides. . . . . . 234 à 240 


CHAPITRE XIII. 
ORCHIDÉES FOSSILES. . . . . 241 à 242 


CHAPITRE XIV. 
CLASSIFICATION DES ORCHIDÉES. 


Difficultés de cette classificatio1. — Classifiations anciennes. — Classification de Lindley. 
— Classification de Benthan. — Classification de Pftzer. — Tableau synoptique 
de la chusification de Pfizer . .-. . - . . . . . . . . . 243 à 249 


CHAPITRE XV. 


DÉTERMINATION DES TRIBUS ET DES GENRES. 


Tableau pour la détermination des tribus. . . . . . . . . . . . 250à 254 
Tableaux pour la détermination des genres . . . . . . . . . . . 255 à 254 


Un 


DEUXIÈME PARTIE. 


L'ORCHIDÉE, SON UTILITÉ ET SA PATRIE. 


CHAPITRE I. 
UTILITÉ DES ORCHIDÉES. 


Usages industriels. — Usages sacrés. — Noms populaires. — L'Orchidée et le dessin 
décoratif. — L'Orchidée et le blason. — Utilisation du suc de certaines Orchidées. — 
Produits alimentaires et médicinaux. — Usage des feuilles. — La Vanille. — 
L'Orchidée dans les salons. — Valeur commerciale des fleurs. — Emballage des 
flsurs d'Orchidées. — Vogue des Orchidées . . . . . . . . . 275 à 295 


CHAPITRE II. 
GÉOGRAPHIE BOTANIQUE. 


Aire de dispersion. — Dificultés que présente l'étude de la géographie botanique des 


Orchidées. — Répartition des Orchidées épiphytes et terricoles. — Étendue de 
l'aire de dispersion des divers types. — Affinité des Flores Orchidéennes. — 
Répartition des espèces dans les diverses parties du monde. — Cantonnement dei 
Orchidées. — Genres à aire disjointe. — Espèces à aire disjointe. — Limites 
altitudinales du domaine orchidéen. — Influence de l'altitude. — Causes qui 


influent sur le développement de l’'Orchidée : Constance de la température. Intensité 
de la lumière. Etat hygrométrique de l'air. Pluies. Répartition de l'humidité. — 
Variabilité. — Acclimatation , . . . . . . s. se cv 7 el 20904 319 


— 600 — 


CHAPITRE III. 
PATRIE DES ORCHIDÉES. 


Le globe terrestre et l'Orchidée. — Zone froide boréale, — Extension du domaine des 
Cephalanthera et Spiranthes.— Zone tempérée boréale : Orchidées nord-américaines; 
Orchidées européennes; Orchidées indigènes belges; Orchidées françaises, anglaises, 
allemandes, etc.; Orchidées alpines européennes; Orchidées du bassin méditerranéen. 
— Domaine des Liparis. — Domaine des Orchis. — Domaine des Ophrys. — 
Domaine des Cypripedium. — Confins des régions chaudes dans l'hémisphère boréal. 
— Domaine des Platanthera. — Aire des Habenaria. — Orchidées chinoises et japo- 
naises. — Domaine des Cœlogyne. — Aire des Pleione. — Zone chaude boréale. — 
Domaine des Aerides. — Aire des Calanthe. — Domaine des Epidendrum. — Aire 
des Chysis. — Zone tropicale ou équatoriale. — Orchidées de l'Asie tropicale et 
insulaire, — Patrie des Vanda et de quelques genres voisins. — Habitat des Cymbi- 
dium. — Patrie des Rhynchostylis. — Orchidées de la Nouvelle-Guinée, — Orchi- 
dées nord-australiennes, — Domaine des Dendrobiutn. — Patrie des Phalaenopsis. 
— Habitat des Anœctochilus. — Orchidées de l'Afrique tropicale. — Orchidées 
tropicales américaines, — Patrie des Anguloa. — Patrie des Bifrenaria. — Patrie 
des Brassia.— Patrie des Stanhopea. — Patrie des Lycaste.— Patrie des Maxillaria. 
— Patrie des Odontoglossum. — Patrie des Oncidium. — Domaine des Cattleya 
et des Laelia, — Domaine des Masdevallia. — Domaine des Paphiopedium. — 
Habitat des Zygopetalum et des genres voisins. — Habitat des Sophronitis. — 
Zone tropicale — Zone chaude australe : Orchidées néo-calédoniennes, mélanésiennes, 
australiennes, des îles africaines. Zone chaude australe américaine. Iles de l'Océan 
Pacifique. — Zone tempérée australe. Orchidées américaines, africaines, australiennes. 


— Patrie des Disa. — Zone tempérée australe, — Conclusion. . . . 320 à 412 
INDEX SYNONYMIQUE DES PRINCIPALES ORCHIDÉES 
CULTIVÉES ET DES HYBRIDES. ? : ... . . Anh 


TROISIÈME PARTIE. 


L'ORCHIDÉE, SA CULTURE, SES AMIS ET SES ENNEMIS. 


CHAPECRE LT 


HISTORIQUE. — CULTURE RATIONNELLE. — PRINCIPES GÉNÉRAUX. 


Historique. — Erreurs d'antan. — Premiers essais de culture. — Les précurseurs. — 
Culture rationnelle, — Conditions variables de la culture. — Principes généraux. — 
Durée de la vie de certaines Orchidées. — Rareté de certaines espèces. — Choix des 
espèces à cultiver. — Répartition horticole des Orchidées . . . . . 487 à 499 


CHAPITRE Ir 
DES ORCHIDÉES CULTIVÉES EN PLEINE TERRE. 


Orchidées de pleine terre. — Orchidées alpines européennes. ,. . . . . 500 à 503 


As. 


== 6or — 


CHAPITRE III. 


CULTURE DES ORCHIDÉES EN SERRE. 


Température des serres. — Serre à Orchidées. — Lumière. — Maçonneries. — Partie 
vitrée. — Onbrage des serres. — Aération de la serre. — H'imidité atmosphérique. 
— Décoration de la serre. — Chauffige. — Tuyaux. — Matériaux de culture. — 
Sphagnum. — Compost. — Du surfaçage. — Matériaux à proscrire, — Orchidées 
épiphytes sur blocs ou sur büch:s. — Pots et paniers. — Culture en paniers. — 
Culture en pots. — Rempotage. — Propreté. — Arrosages et seringages. — 
Eau. — Engrais — Drainage. — Lavage des feuilles. — Tuteurage. — Maladies. — 
SUITE ECS 2 2 2 D + nt.) © 7 . 504 à 544 


CHAPITRE IV. 


ORCHIDÉES IMPORTÉES. 


Traitement des Orchidées importées. — Époque des importations. — Des soins à apport2r 
à la récolte des Orchidées. — Plantes établies. — Valeur des importations. — Culture 
ns TO PAYS MORE LE ee As ma lraos 2) cv: .S4R 41682 


CHAPITRE V. 
DU REPOS CHEZ LES ORCHIDÉES. 


Période de repos. — Durée et époque du repos. — Traitement pendant la période de repos. 
553 à 555 
CHAPITRE VI. 
DU RAJEUNISSEMENT ET DE LA MULTIPLICATION DES ORCHIDÉES. 


Rajeunissement. — Multiplication des Orchidées. — Multiplication par division. — Semis. 


559 à 564 
CHAPITRE VII. 
ENNEMIS ET AMIS DES ORCHIDÉES. 

Les ENNEMIS. — Les Algues. — Champignons microscopiques. — Insectes. — Moyens 
préventifs. — Insecticides. — Thrips. — Pucerons. — Cochenilles, Kermès, etc. — 
Araignée rouge et Acariens. — Blattes. — Forficules. — Myriapodes., — Lombrics.— 
Cloportes. — Limaces. — Charançons. — Fourmis . . 502570 

Les AMis. — Principaux auxiliaires du jardinier. — Insectes re — Coccinelles. — 


Carabes. — Staphylins. — Défense préventive . . . . . . . . 580 à 584 


à Al 
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" 


orchide 


3 5185 00058 2195 


Le livre des 


= 


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