) ETN SS A

“™{Z Biology Lab Manual Series

RNA Methodologies:

A Laboratory Guide for |—

Characterization

3

鉴定 实验 指南 -一 RNA 方法

[ ] R. E. (Robert E. Farrell, Jr. ) SAY 刘建华 SF

@e@thek he 生物 "医药

oo)

Br O! 3 008)

met Fi = TOO)

生物 实验

书目 © RAT AS RK (2004 fF 3 ) 物化 实验 技术 (2005 5 重印 ) 实验 手册 LE) (2004 5 ) 仪器 (2005 6 重印 ) 基因 动物 技术 手册 LE) 《2004 10 ) ¢ RNAi 基因 沉默 指南 LE) 《2004 10 FR) 。PCR 技术 原理 《2005 1 ) 指南 《2005 3 ) 生物 实验 参考 手册 LF] 《2005 6 ) 。DNA 标记 技术 植物 研究 (2005 6 ) 科研 简明 手册 LE) (2005 7 ) 微生物 实验 技术 (2006 1 ) 【〈 ) LIE] 《2006 1 ) 植物 生物 技术 手册 (2006 2 FR) 生物 蛋白 实验 方法 LE) (2006 fF 2 A) © PCR RASA (Bh) (2006 3 ) 植物 细胞 工程 技术 (2006 4 ) 安全 实验 (2006 4 ) 肿瘤 细胞 培养 OE) (2006 5 ) 生物 实验 技术 (2006 6 ) 工程 LE] (2006 6 ) 实验 技术 (2006 6 ) EMMA RAMA (2006 9 月) 技术 《2007 1 ) 蛋白 蛋白 实验 指南 FE] (2006 10 ) 。RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法 LEI (2007 11 )

LE] 生日 指责 LE RA FARRERA

a ———

生物 实验 系列

RNA 鉴定 RNA 研究 方法 Or 8 = hi)

L=]R.E. j&BR (Robert E. Farrell, Jr. ) Sh Wet ¢ 5

iin

编目 (CIP) 数据

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法 / [ ] 〈Farrell,R.E. Jr.) ; 建华 . 3 .一 北京 : 工业 ,2007. 7

(生物 实验 系列 )

原文 : RNA Methodologies: A Laboratory Guide for Isolation and Characterization, 3rd edition

ISBN 978-7-5025-9625-5

I. R= [. O#-O:-@xX)l:- OF: Tl. 核糖 核酸 -研究 方法 ,K.Q522 书馆 CIP 数据 〈2007) 105375

RNA Methodologies: A Laboratory Guide for Isolation and Characterization, 3rd edi- tion/by Robert E. Farrell, Jr.

ISBN 0-12-249696-5 978-0-12-249696-7

Authorized simplified Chinese translation edition jointly published by Chemical Industry Press and Elsevier (Singapore) Ltd, 3 Killiney Road, #08-01 Winsland House I, Singa- pore 239519.

981-259-639-9 978-981-259-639-0

Copyright©2007 by Elsevier (Singapore) Pte Ltd.

Copyright©2007 by Chemical Industry Press All rights reserved.

This edition is authorized for sale in China only, excluding Hong Kong SAR and Tai- wan. Unauthorized export of this edition is a violation of the Copyright Act. Violation of this Law is subject to Civil and Criminal Penalties.

翻译 工业 Elsevier (Singapore) Pte Ltd. is 国内 合作 . 国境 包括 香港 特别 行政 台湾 ) 标价 销售 许可 违反 著作 制裁

北京 著作 合同 登记 : 01-2006-3433

责任 编辑 : (EDO HAE 文字 编辑 : fel 责任 校对 : ERI 装帧 设计 :

: 工业 东城 青年 湖南 13 ”邮政 编码 100011)

hall: 北京 印刷 责任 公司

:

787mmX1092mm 1/16 印张 27 字数 658 2008 1 北京 1 1 印刷

购书 咨询 : 010-64518888 (传真 : 010-64519686) 售后 服务 : 010-64518899

hk: http: //www. cip. com. cn 缺损 质量 问题 负责 调换

: 63. 00 BAO

参加 翻译 先后 )

“Ge KR Be B wu F BHF F fF F fH KR 刘建华 NBR AX BR KR EZ Sl PRR # AR 波涛 BEA BPaK

qe VA th HEA Catherine Ann, Sean Patrick, Emma Catherine, Liam Michael

Patrick Joseph!

21 世纪 生命 科学 世纪 共识

生命 科学 自身 自然 认识 萌芽 生产 科学 实践 进步 包括 生物 传统 生物 技术 环境 科学 乃至 社会 科学 渗透 产生 。20 世纪 尤其 生物 取得 系列 突破 使 生命 科学 自然 科学 体系 革命 变化 21 世纪 带头 生命 科学 寄予 希望 解决 社会 面临 膨胀 匮乏 病危 污染 生态 破坏 系列 重大 问题

回顾 生命 科学 历程 技术 非常 重要 促进 作用 17 世纪 Leeu- wenhoek 显微镜 技术 催生 “细胞 ”的 建立 ; 1973 Cohn Boyer 完成 DNA 体外 重组 实验 基因 工程 ; 1988 4 Kary Mullis HA PCR 技术 甚至 使 生命 科学 产生 飞跃 开启 神奇 生命 王国 钥匙 实验 技术 没有 生命 科学 今天 巨大 ; 同时 科学 实验 技术 提出 科学 “实验 催生 验证 基础 理论 理论 实验 循环 必然 王国 走向 自由 王国

生命 科学 工作 技术 仪器 设备 设计 实验 方案 开展 实验 合理 结果 工业 “生物 实验 整体 规划 基础 “经 沿 技术 原则

题材 上, 系列 涵盖 综合 实验 技术 单项 实验 技术 方面 综合 实验 技术 实验 目的 “蛋白 ”, 覆盖 实验 技术 ; 生命 综合 实验 技术 “发 实验 技术 ”“ 物化 实验 技术 ”等 单项 实验 技术 深入 介绍 专项 技术 阐述 基本 原理 基础 介绍 技术 领域 “双向 电泳 技术 ”、“ 细胞

主要 显著 特点 强调 先进 除了 系统 介绍 常用 技术 突出 当前 领域 实验 手段 理论 技术 国内 专业 借鉴 引导 作用 强调 操作 实验 技术 介绍 方法 仪器 实验 读者 明了 实验 目的 具体 步骤 结果 实验 指南 作用

系列 国际 资源 方面 国内 相关 领域 理论 丰富 实验 专家 编著 ; 方面 国际 生命 科学 沿 领域 先进 技术 进展 引进 影印 ) 国外 知名 权威 力作

“生物 实验 读者 国内 生物 技术 相关 领域 (如 医学 ) 专业 研究 公司 生产 技术

教师

殷切 希望 “生物 实验 服务 国生 需要 热忱 欢迎 关心 生命 科学 广大 科技 提供 宝贵 意见 建议 系列 题目 设计 贡献 良策 推荐 作者 便 集思广益 系列 沿 持续 方向

关心 热爱 生命 科学 生命 科学 科学 工作 崇高 敬意 ! 祝愿 科技 事业 生命 根深 !

工业 生物

ea AY

1998 院士 院士 建议 山大 教授 主持 “面向 21 世纪 RNA 研究” 109 香山 “20 世纪 NA 研究 21 世纪 RNA 研究 展望 ”的 主题 报告 21 世纪 RNA 研究 预测 : RNA 产物 基因 计划 CRNA 计划 ) ; 方面 突破 进展 ,@ RNA 基因 增加 QRNA 功能 ,@ 蛋白 功能 揭示 ,@ 结构 破解 ,@RNA 结构 计算 模拟 ; ,RNA 研究 迅速 产业 进入 实际 阶段 建议 开展 NA 产物 基因 计划 CRNA 计划 ) ,RNA 方面 进展 连续 5 美国 “Science” 突破 。1999 2000 核糖 核酸 催化 功能 核糖 使 。2001 实验 # RNA (miRNA), 2001~2003 3 RNA 调控 功能 siRNA miRNA RNA 。“Science” -2004 突破 认为 基因 垃圾 控制 基因 阅读 控制 基因 表达 垃圾 RNA 。2006 贝尔 生理 医学 授予 医学 安德鲁 (Andrew Fire) 理工 医学 % (Craig Mello) 表彰 RNA 引发 基因 沉默 调控 RNA 调控 RNA, “Science” 科技 突破 ,8 今天 预言 现实 RNA 功能 待人

曾几何时 国内 涉足 RNA 研究 现在 希望 开展 RNA 研究 2005 编著 《核糖 核酸 核糖 核酸 ), 2006 2 印刷 作为

核糖 核酸 生物 功能 调控 功能 核糖 核酸 DNA 平和 RNA 调控 遗传 信息 改变 阅读 范围 调控 基因 表达 细胞 周期 促进 包括 涉及 生命 科学 RNA 技术 引进 自己 研究 领域 科研 RNA 研究 领域 实验 手册 RNA 实验 手册 提供 操作 程序 实验 难以 理解 困难 原因 往往 NA 技术 y 操作 程序 实验 失败 合适 程序 操作 。RNA 操作 DNA 操作 困难 RNA 核糖 DNA 脱氧 核糖 造成 RNA 稳定 RNA 完整 RNA 实验 关键 ,恰恰 实验 忽视 。Robert E. Farrell, Jr. “RNA Methodologies” 操作 程序 实验 注意 事项 12 3 原因 翻译 原因 希望 RNA 研究 工作 理解 RNA 技术 正确 使 实验 程序

促进 RNA 研究 开展

教授 交通 刘建华 教授 实验 20 参与 翻译 校对 师兄 RNA 研究 46 2005 获得 国家 自然 科学 生命 科研 工作 精神 值得 同年 院士 师兄 师弟 退休 教授 参与 研究 繁重 科研 工作 影响 职工 认真 翻译 使 感动 相信 工作 进行 28 RNA 研究 感到 翻译 收获 翻译 夫人 女儿 付出 精力 同行 参与 翻译 AR HENS RR

BREW RNA 研究 尽快 先进 盼望 读者 存在 翻译 失误 提供 宝贵 意见

科学 研究 生物 细胞 生物 研究 2007 #2 A 28 8

什么 研究 RNA? 1993 “RNA Methodologies” 1 提出 生物 活性 稳定 RNA, 核心 问题 赏识 今天 恰当 2 方面 基因 计划 完成 功能 基因 蛋白 研究 探讨 转录 白质 唯恐 忘记

明显 异性 基因 表达 调控 研究 聚集 强烈 兴趣 领域 那些 昂贵 尼龙 玻璃 片上 基于 标准 定量 PCR 测试 建立 合适 生物 材料 质量 RNA 基础 质量 RNA, 支持 研究 功能 辅助 阵列 技术 当代 研究 工具 那些 “已 仔细 检查 序列 ”, 克隆 基因 阵列 技术 直接 支持 鉴定 基因 剪接 转录 转录 检测 鉴定

因此 基因 表达 参数 NA 研究 实验 仍然 常用 mRNA 生物 合成 RNA 复杂 精致 控制 观点 细胞 生物 提供 独特 视角 那些 传统 实验 方法 PCR 灵敏 方法 鉴定 细胞 转录 活性 。mRNA 生物 合成 功能 受到 转录 转录 影响 构成 基因 调控 ,RNA 稳定 细胞 显然 调控 作用

按照 科学 基础 规则 NA 鉴定 方方面面 连贯 整体 方面 研究 目标 基因 表达 调控 较为 明确 解释 生物 材料 纯化 质量 RNA, 基本 灵敏 方法 包括 Northen 传统 技术 失去 RNA 技术 随后 操作 具有 同等 重要 细胞 RNA, 支撑 技术

实验 指南 测试 优化 实验 (实验 方案 ), RNA 鉴定 方法 关注 原核 转录 3 注意 增加 若干 RT-PCR 穿 5'RACE、3'RACE、 Zw PCR 方法 优化 互补 DNA (cDNA) 合成 方法 那些 信息 讨论 RNA Fat CRNAiDD 阵列 生物 信息 技术 章节 目前 测定 细胞 特定 转录 绝对 空前 兴趣 显得 尤为 重要 RNA 表达 参数 进行 研究 技术 独立 运用 试验 结合 基因 表达 转录 转录 调控 进行 研究 提供 忠告 : 实验 选用 RNA 方法 实验 程序 数据 解释 影响

独立 研究 : 课题 )、 医师 实验 技术 任何 基础 研究 技术 熟练 研究 抉择 遵循 基本 原理 切实 权宜 注释 提示 基于 生物 材料 那些 核糖 核酸 材料 RNA 铺路 清楚 研究 什么 进行 研究 导致 RNA 策略 设计 缺陷 造成 生物 材料 浪费 基因 表达 基本 原理 正确 操作 试验 RNA, 反复 主题 清楚 论证 特定 技术 配合 核酸 研究 框架 希望 读者 研究 跳跃 选择 验方 拘泥 连贯 那些 开始 RNA 观点 研究 细胞 生物 读者 26 RNA HH) 帮助

章节 共同 构成 RNA 特写 提供 明确 流程 促进 帮助 研究 规划 目的 执行 自己 灵活 限制

衷心 感谢 理性 鼓励 方式 支持 书写 同事 朋友 支持 耐心 表示 公开 感谢

〈《 ; )

1H RNA SS 细胞 生物 .5

i‘

—y =" bo ry _ . . . .

1 2 3 4 5 1. 1. le 1. 6 7

什么 研究 RNA

oy 18 | 2 A eee are BERG FF IRA cee ce eee cee cee cee eee cee eee ees

RNA 严谨 影响 核酸 结构

5.1” 严谨 影响 “pp

5.2 pH 严谨 影响 5.3 温度 严谨 影响

5.4 酰胺 严谨 影响 …………………

.pp 参考 文献

2 组织

Be

1

2.

2.

LS ces fee ees

Lob eee

2.2 基因 2.3 RNA 聚合 转录 产物 …… 2.4 参考 文献

RN AS or0< 02 var ctor up a0 ve 3.

FS

1 3 3 ae 3 3

alll ol aol el rn nO FF; WH WN

A

aw ’»S —_

ou

Cres Oo “< «OUD

。。 10

典型 mRNA 拓扑 结构 …………….

SF ~

2 headlands 尾部 序列 -一 :…-。 BR iG TE EB eee eee eee 细胞 mRNA ………-

3.2 av SS as 24. SEVM-----:----

4 核糖 核酸

4.

4. 4.

“让

基本 原理

PAE RE ITE HE ADT BR cee cee eee eee eee eee

核糖 核酸 抑制 …… .3.1 特异 RNase 抑制 .3.2 非特 异性 RNase 抑制

志和 准备 生生 2

Ag k++ 552, RE Rs es 8 te aay... 3-9)

a

4.4.2 替代 方法 消毒 冲洗

ie

4. $ RNA 分离 策略 pp 6. Be 5

4.4.3 氧化

4.4.4 a3

7

1 2 3

D.

4 a)

5.

6 Ds De BY’ Ds

19 De Syd as

end gO ol gl od ak ak eee a

控制 核酸 活性 试剂

1 2 3 4 a5 6 7 8 9

.10 RNAlater (RNA 保护 )

Eb ABA ……- GEA NE EE SOR AG cc cer nes one

N--+ fe 38 MLA BR

硫酸 ………

SEM) © BUG: FEB cere eee

BFA IE DED oa eee secocecnesens FAL a coerce ce cee cee eee eee eee

蛋白 K

实验 方案 : 核糖 复合 2 参考 文献 ……:

基本 原理 pp RNA 纯化 目的 -

BU fige ah Yi EAE By coe eee cee eee ceeeeceeecesene 温和 裂解 缓冲 .pp 5.3.2 ,高 含有 缓冲 RNA - -

ail

|

实验 方案 : - - -

密度 梯度 离心 Ce en ee ee ae rer

6. 1 6.2

= MZ RH

同时 RNA #1 DNA

Vics!

8. 1

ori

9.2

实验 方案 : 同时 RNA

NT BRA AE TE TBE TRE ede +s ears oh nee ohn toe BEA Fy BE «00 c0e scale gdihh Sok s6e by

实验 方案 :

实验 方案 : 原核 RNA

硫酸 乙酸 快速 RNA

es

Ds

De

5.9.3 实验 方案 : 酵母 RNA .…… 10 纯化 RNA 短期 保存

oy ae 11 参考 文献 -

6 提取 RNA

6.

6.

基本 原理

培养

-2

.2. SA EURE OIE wee nee eee eee eee eee eee Pag Min sae

.3.1 Polytron 破碎 ………:

-3.2 HAMAR:

RNA

Fi PE coe eee

4.1

.4.2 冷冻

.4.3 固定

实验 方案 : 氧化 -尿素 RNA =:

6 实验 方案 : RNA

7 纯化 核糖 mRNA ves

6.7.1 实验 方案 : RAS BBN

mRNA 提取

CR FE Ove Co

eS eS: 3) 2 ee .9 RNA “41h” FH 6.10 BAH -

S78 SRRHMRNANSR ……….

te

ST Ny Ie IE

.6 oligo(dT)-FAARER -

-1 BARE

3 poly(A) 解释 ………………

4 酸化 mRNA .……………

5 技术 纯化 poly(A)* RNA +++ +--+

7.5.1 实验 方案 : 纯化 poly(A)+RNA .…………

7.6.1 实验 方案 : 生理 poly(A)- RNA 纯化 pp

.7 快速 纯化 poly(A)” RNA …………

7.7.1 实验 方案 : 快速 纯化 poly(A)+ RNA csseesceeese tects eee eee

8 参考 文献

8 RNA 质量 控制

8.

1, 原理

wee wees

8.2 质量 控制 技术 1: RNA 电泳 8.2.1 ZB: renee 8.3 质量 控制 技术 .2: 紫外 吸收 光谱 吸收 8.3.1 核酸 浓度 纯度 鉴定 .pp. 8.4 质量 控制 技术 3: RNA 样品 进行 -CR 8.5 质量 控制 技术 4: Northern ………… 8.6 质量 控制 技术 5: RNA 样品 进行 体外 翻译 8.7 参考 文献 9 斑点 印迹 9.1 基本 原理 9.2 BER EWR AY HE ER AUG coe cee cor ene eee cee ene 9.3 合适 阴性 阳性 wee eee eee 9.3.1 实验 方案 : RNA 斑点 印迹 9.3.2 实验 方案 : DNA 斑点 印迹 9.4 BER EDR HE AQIS BRE ccc cee concer eee eee 9.5 参考 文献 - 10 电泳 . 10.2 PERO RGER FEAL --->-+--- eee TD

实验 方案 : poly(A) 标准 .

10.3 琼脂 RNA 样品 变性

UO ene 10.3. Z EU SS 10. 3. 4

甲醛 变性

实验 方案 FA PRE AB HE BR oo eee eee ZB /— WER

电泳

10.4 标准 10. 4. 1 10.4.2 核糖 RNA creese cee eee tee eee eee eee

10.5 染色 技术 …:

10.

10. 6

an Go SU AH oH ON

NY Da OO ee W DH

标准 正确 使

SY BR Bh wr creweewiewell SYBR 4 vis han eS GelStar

实验 方案 : RNA

fi 5

ss ences tag Re Se ort. actushers

90

- 92

RO. 10. 8

10.

10. 10. 9

电泳 仪器 维护

进行 琼脂 提示

81 RERRF

参考 文献

11 照片 文档

11.2

11.4

基本 原理 照片 文档 :es,

BET VRP ASA AL, «2-6 te a 亲人 .2.3 安全

.2.4 优化 电泳 些小 技巧 ………… .2.5 照相 技术 X 射线 胶片 固有 3 11.

3.2 实践 需要 考虑 问题 参考 文献

12 Northern 印迹 .

2 2

12. 12. 12.

12.°3 12. 4

>> Ss PS NY rma oO FSF WO WO KH

基本 原理

90 pa ee 2.1 硝酸 纤维 .… cee cee cee cee eee eee eee

ee Wear a Oe sakes sce RRR

2.3 BEA FZ EAB vee cee eee ee eee eee

FBR AY YEAS PBL ooe eee eee eee eee cee eee Northern 毛细 …:

涡轮 印迹 cee cee eee eee ees FES ERE cere eee eee

TE FR SE BE vee ee eee eee eee HE EDGR PE vee eee eee eee es 印迹

实验 方案 : 毛细 扩散 转移 RNA vee eee es

.4.8 实验 方案 : 涡轮 印迹

HER RNA - …………:

25.1 FA BB ABHE Gh on bee cee cee cence denen .5.2 变性 系统 ere

固定 技术 :……………:

.6.2 紫外 线 .6.3 实验 方案 :

RNA 紫外

Si

13 “” 核酸 技术

Nay Wye eP see hs BS

13.3 “标记 系统 选择 …… 13.3.1

3s 4

FE SEF ES PRY AD BRE a de ee ced ai eee ee leeees $2.9 > Bee eR as Nd

同位 :pp 13.3.2 标记 ……………: TIN DNA 合成 ……

13:5 ee RNA AA... S

le Fata |

RNA PRET AVHRR cose eee eeees

13.5.2 RNA 合成 coe cre eee eee eee eee

13.6 FRET AQSTAL ee

13.7 SREP ae AMD

13.8 PY YRS HRY weve eee ceeees 13.9 Hewes 14 核酸 杂交 14.1 基本 原理

14.2 影响 杂交 动力 特异 因素

14. 14. 14. 14. 14. 14. 14. 14. 14. 14. 14. 3 14. 3.1

IE BF vee eee PH seeeeesee cee eeees

………

复杂

NI IE DY DY DY DY DY YD oo wont Don FF ww DY

杂交 温度 Ta it +

14.3.2 SRP RRTH Tu 计算 杂交 Northern “pp 杂交 ;, WE ABAD FH nee see eee eee reese 实验 方案 : WARS (长 )

14. 4 14. 4. 1

3 4 杂交 .

.5 vile 严格 洗涤

ee

PEELE PEE ce sey sve von SEEDS. (GC) Se «- E... 3.

PRL ESD Ge A: Bank SES. FO > FARR RR coe ses sre see Qhe

° iT

ween

150 | Ps eat 15. FSB EOP RR ct sdnceses

15.2 WHERE

15.2.1 cee cee cee cee eee cee eew eee 15.2.2 X BEAR PRE creer cee cence eee eee 15.2.3 BENT 于- -这 < 15. 2.4 曝光 15.2.5 …… 15.2.6 ”荧光 -ee 15.2.7 PRR PUA …………… 15.2.8 BE FE A HURG -2- 22 eee cereee eee eee eee 15.2.9 显影 ee 15.2.10 放射 显影 : 推荐 方案 GREE 4 cil 0% 978 eee 15.3.1 生物 ………… eee eee 15.3.2 ………- 15. 3.3 荧光 标记 …………… 15.3.4 直接 .pp 15.3.5 .pp 15.3.6 检测 15.4 RF MRA BE 15.5 参考 文献 16 保护 定量 测定 特定 mRNA_ .…… .去 …. 16.1. SEAR RBH eee eee reece eee es 16.2 BEAT cveeee cee cee eee cee cen enn ee OME A231 Se 16.4 FEAL BEM cree 16.5 困难 16.6 实验 方案 : S1l 核酸 保护 定量 转录 产物 16. 7 aa RNase 保护 定量 转录 产物 wr at 17 RNA SAT were eee 17.1 SEAR FB coe see eee cee cee cee cee cee eee eee eees

17.2 ”转录 速率 检测

“人 10

17.3 实验 方案 : 逃逸 实验 H+ mRNA

17. 3.1 irae 17/33

17. 3. 4

细胞 收集 细胞 制备 NP-40 缓冲 细胞 细胞 制备 方案 : 培养 细胞 细胞

细胞 方案 ;: 完整

213

213

215

17. 3. ras Lo 3- 1758.

1%~3. 17. 4

ges

17.6

teed, 17.8 en

17. 10 18 18. 2

1822. 18. 2.

18. 3 18. 4 18.5 19 19.1 19. 2 19.3 19. 4 19.5

19. 5. LO.

19.6 INS bff 19.8 SS

TORS:

1959.

1949: 19. 10 19. 11

19. 12 19. Is

5 RE SE ARID corer eee eee eee ener eee 6 BR FE EY AWC en cee eee ee eee 7 DNA 制备 8 ”用 杂交 RNA 制备 oe 9 杂交 检测 实验 方案 : 实验 方法 ) …… 实验 方案 ,核酸 保护 脉冲 标记 转录 RNA 聚合 I 、RNA 聚合 RNA 聚合 活性 .………………: 提取 RNA +--+ 实验 方案 : 直接 RNA oe 实验 方案 : 核糖 核酸 细胞 制备 RNA” ies- 3: sain ey Sa Se ee ee CDNA ¢ A. +++ 40-86-20 os ss eat: Cee ee ee oe, CDNA: 4 BRA s+0 0+ 00+ tray aete ee 1 注意 事项 ee 2 合成 注意 事项 .……………: PK CDNA ZBL AG RL BB ne vee cence ee eee ee ts ee ee 参考 文献 反应 eee 基本 原理 聚合 概述 基本 方法 ……… 实验 设计 | INU Hp ne wns ene cen ene cee mnectinewe eos ome aie 1 SEACRR YE «~~ -<< de -aeeR. ge Me 优化 程序 .…… PCR 产物 RT-PCR 质量 -全 相关 技术 1 cDNA 5 末端 快速 PCR 2 cDNA 3 末端 快速 PCR 3 Sis PCR 实验 方案 : cDNA B-HHAR - 实验 方案 : PCR RMP i cDNA

PCR 产物 克隆 - 实验 方案 : PCR 产物

19. 14 19.15 19. 16

ce 实验 方案 : TA 克隆 连接 反应 TOPO 克隆 -

BAER: enn non cae one seve cerns

$520 TH PCR RAH - ee eee eee

20.1. BEAR BR aoe eee eee cee eee cee cee nee ene ceenee eee 20. 2 灵敏 指标 voce eee cee eee cee eee cee eee eee ees 20.3 定量 方法 .……………………….

20.4 - PEWS HAY or vee eee cee eee cee nee wee ees 20.5 .外 参照 .0 20. 6 规划 .5 20.7 关于 ………:

20.8 竞争 PCR 关键 因素 veer creer eee 20.9 竞争 PCR AQ BER wee eee eee eee eee es

20.10 SAH: PEF PCR ver eee eee eee eee ees 20.10.1 竞争 模板 合成 ……… 20. 10.2 cDNA 合成 20.10.3 竞争 PCR (RP HH) cee 20.10.4 竞争 PCR (次 ) …………. 20. 11 关于 考虑 ………:

20. 12 ”竞争 PCR 问题 解答 +e eee eee eee eee eee

20.13 Af PCR -----

20.14 BAER cnc cee eee eee eee eee

21 转录 减法 ….

a1. ai. 21. 21. 21. 21.

Qn a orem DS oT

= a ee 关键 问题 ……

-校正 PCR ………

AE PCR 22 .……………………- 减法 问题 解决

参考 文献

22 mRNA 差异 显示 .………… Cg So SE SS Se ee 22.2

22.3 产物 : 预期 什么 ………: 22.4 实验 方案 mRNA 差异 显示 cee 22.4.1 CDNA 合成 [aassameaeoesaaesin。 22.4.2 通过 PCR cDNA 22. 4.3 PCR 产物 22.5 实验 方案 : 差异 表达 序列 鉴定 22.6 差异 表达 序列 …… 22.7 PCR 产物 克隆 29S Bs ER ei ita RR ca ee ec gate er

321

$2358 ”基因 表达

26

Py We ee Ly eee

OMe ac)

22.11 mRNA 差异 显示 问题 解决

22.12 BEIM -

23.1 FEAR HE:

23.2 阵列 什么 ……

23.3 PABEFI BEAL Z coe een cee cee een cee cee eee eee 23.4 PREF AR BEBE ZA oon eee eee cee eee eee cet eee 23.5 阵列 主要 步骤 nee eee cee cee eee 23.6 RNA ……

23.7 Sir Fh See

23.8 参考 文献

24 RNA 目标 基因

-本 24.1 基本 原理 ………………: 24.2 BBE AY RNAI 术语 pp 24.3 RNAi 工作 coerce eee eee eee 24. 3. 1

24.3.2 shRNA 方法 cee 24.3.3 DNA 指导 RNAi 技术 oe 24.3.4 siRNA 导入 哺乳 动物 细胞

24.4 APRA SIRNA 设计 生生 < 24.5 FAR AIA PY AAD I] BBL --- eee eee eee cee eee eee

24.6 BMA

$238 BAA, RA. SARA

生物 信息 25.2 BERR 25.3 基因 基因 …………. 25.4 转录 转录 …………………. 25.5 TE Se 5 Be A one ne ee eee ceeeee 25.6 WT Be nnn one connec nse cee ene nnncee ene one 25.7 参考 文献 ……………………-

RNA 范例 ………

20

26.2 FA RERE RD]: ee 生机 RES. Le

26.3 ”有待 26. 4

尾声 i a Relating en Re

REA ay 全、

358

Sp ee

附录 1 附录 2 附录 3 附录 4 附录 5 附录 6 附录 7

附录 8 附录 9

保存 完整 准确 记录 ……… 苯酚 制备

SYBR 绿

ae:

DNase | &BR RNA 样品 DNA

RNase & BR DNA 样品 RNA

FH. RAZ ORK 硅烷 离心 玻璃

主流 工具

Sons 72 St iff)

附录 10

附录 11 附录 12 附录 13 附录 14 附录 15 附录 16 附录 17 附录 18

Ris He -

索引

. cee 蛋白 消化 方法

DNA

植物 RN os

电泳 原理 安全 丙烯 酰胺 仪器 服务 供应

ST ww

通用 缩写 商标 引用

#215 RNA

1.1 研究 RNA

细胞 功能 受到 基因 表达 调控 选择 研究 RNA 调控 作为 细胞 生物 参数 理由 RNA 群体 ,RNA 具体 科学 研究 提出 转录 基因 表达 ) 问题 联系

任何 RNA 实验 设计 目标 功能 问题 问题

© 测定 细胞 转录 @。 RNA 容易 研究 基因 表达 参数 Northern 杂交 保护 实验 PCR 相关 方法 测定 RNA 表达 定性 定量

Q 基因 序列 转录 RNA 速度 测定 mRNA CK 逃逸 实验 ) 进行 推断 进行 mRNA 放射 同位 标记 核糖 测定 RNA 同位 比例 比例 RNA 结合 Northern 杂交 结果 序列 调控 转录 转录 事件 造成 结果

@ RNA 结构 5 末端 、3 末端 通过 核酸 保护 实验 16 ) 完成 工作 现在 基本 使 PCR cDNA 快速 (5'RACE 3'RACE, 19 )。

® 体外 细胞 系统 纯化 mRNA 进行 翻译 进一步 Western 杂交 翻译 特殊 转录 鉴定 方法 翻译 模板 原材料 推定 属性 转录 支持 序列 合成 ) 方法 转录 转录 同一 转录 药物 设计 研究 蛋白 结构 突变 功能 功能 蛋白 领域 方面 提供 启示

@ cDNA 合成 纯化 mRNA 模板 转化 相对 稳定 转变 稳定 cDNA cDNA。 CDNA 理由 众多 PCR 方法 核酸 序列 工作 非常

@ 细胞 细胞 细胞 ) RNA 积累 RNA

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

转录 接连 测序 载体 表达 载体 合成 整个 CDNA 文库 正式 克隆 通过 繁殖 保存 )。 合成 文库 细胞 裂解 瞬间 细胞 生化 建立 永久 记录 历史 观点 ,cDNA 合成 生物 实验 技术 重要 方法

生物 角度 ,RNA 没有 DNA 稳定 温度 (>65°C) 存在 情况 因素 具有 核酸 活性 核酸 核糖 核酸 明显 具有 摧毁 因此 核糖 核酸 生物 材料 制备 RNA 因素 使 核糖 核酸 污染 试剂 快速 回收 RNA。 必须 考虑 原本 封闭 细胞 释放 核糖 核酸 程序 潜在 核糖 核酸 污染 失察 例外 导致 RNA 降解 导致 样品 报废 需要 研究 考虑 “纯化 结束 RNA 什么 >。 操作 污染 即使 影响 效率 paheengit 得, RNA 相关 实验 安排 RNA 纯化 当天 进行

1.2 RNA 什么 RNA 磷酸 连接 核糖 单元

pee RNA MAK RNA RNA (AIDNA) WEA RTE RHR.

se 主要 : CRNA noo Moo, SAS BH 核糖 ,DNA 脱氧 )、 磷酸 HL alah Ta aa C11). ABS & RAE du <— RNA 合成 磷酸 :,

(H) «— DNA RNA DNA 主要 差异 : OBE 2

1.1 5/- (ATP)。 羟基 (—OHD, ii DNA “〈 核糖 )

磷酸 a. BAY. HBR Ge) ”2 ,@RNA -

距离 编码 2'-OH H 胸腺 相似 尿 9。RNA HK

取代 脱氧 ,DNA 脱氧

,RNA 含有 核糖 DNA 含有 2 -脱氧 1.1 1.2 它们 基本 特征 命名

1.1 结构 比较

核糖 脱氧 核糖

主要

常见 ry Wi Wie

.磷酸 FA HE 脱氧 磷酸

ARMS SR Fi PE BoE DR

ARE See

@ 命名 尿

1 RNA 细胞 生物

1.2 基本 命名

BH ROH = RR)

5! RS RTF = BEAR 5'- 磷酸 5 - 磷酸 5 - 尿 磷酸

5 -脱氧 磷酸 5 -脱氧 磷酸 5 -脱氧 磷酸 5 -脱氧 胸腺 磷酸

: 1. 2) 环形 特定

使 特殊 编号 系统 sua co 1、2、3 依次 编号 NH, inlaid 1 、2 m 13 a oa: tae

磷酸 作为 单个 ea d ea NTP 表示 生物 实验 手册 is Be a hats HH, NIP (teem Raw ATP. cTP, MEL ot LR AD GTP UTP。 磷酸 d 表示 ioe H ig

Anas ME AQ ARIEIE FRNBIE 共同 结构

dATP. dCTP, dGTP dTTP. 实验 手册 ,dNTP 表示 摩尔 “图 1.2 连接 1' 命名 脱氧 磷酸 BWM RNA A DNA 标准 单字 形式 RNA 聚合 DNA 聚合 (A), Fee CC), See 识别 核酸 合成 作为

磷酸 w- 酸根 依次 酸根 磷酸 广 磷酸 核糖 11). BRAM, BRERA 7 磷酸 切除 磷酸 新生

1.3 合成

RNA 聚合 负责 参与 RNA 合成 2 ), DNA 聚合 参与 DNA 合成 活性 合成 核酸 磷酸 连接 核酸 聚合 催化 3 -羟基 攻击 5 -磷酸 形成 磷酸

假设 细胞 生物 反应 支持 RNA 延伸 体内 体外 ) 必须 维持 基本

OD 必须 存在 模板 指导 互补 方式 正确 核酸

3.

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

配对 方式 必须 符合 A::U A::T 通过 配对 ,G :::C 配对

@ 延伸 存在 游离 3 -OH, 磷酸 连接 体内 体外 转录 需要 引物 提供 游离 3 -OH。DNA 合成 需要 引物 8。 使 需要 模板 引物 3 -OH。

延伸 涉及 磷酸 磷酸 形成 伴随 释放 RNA DNA AM, MEM 5 3 延伸 合成 保持 统一 5 3 连接。 延伸 聚合 5 3 延伸 活性

核酸 方式

@ 末端 结构 截然 参与 反应 5-( ) 5 末端 8。 3 -OH, 3 末端

Q 骨架 交替 排列 磷酸 磷酸 原因 使 负电

Q 骨架 立体 角度 容易 互补 序列 形成 )。 核心 形成

eh FU DAZE Tt MRS CARERS AS RS) ARE CHE. A RE A PR ED. ET AB

扁平 芳香 1. 2). RS me

氨基 偏好

,“ 氨基 ) 胸腺 尿 《不

Wath REE) 维系 具有

原子

方向 磷酸 突出 方式

利于 互补 杂交 方式 形成 5 末端 互补 3 末端 形成 CAI 1. 3)

基于 5 末端 3 末端 明显 结构 差异 形成 惯例 明确 指出 任何 拓扑 核酸 ;

相对 靠近 5 方向 结构 特性

相对 靠近 3 方向 结构 特性

简洁 相应 表示 “和 表达 方向 相反 ”与 “和 表达 方向 > 描述 显著 特征 讨论 基因 表达 设计 PCR 引物 命名 显得 特别

具体 序列 RNA 结构 RNA 倾向 形成 结构 相互 作用 诸多 命名 RNA (interior loop) (bulge loop)、 (multibranched loop) 层次 结构 ) 结构 集合 描述 结构 RNA 行使 生物 功能 必需 。tRNA 案例

© 唯一 需要 模板 信息 添加 DNA 聚合 末端 脱氧 转移 末端 转移 广泛 cDNA 合成 5'RACE。 18 MAD 19 讨论 特例 @ mRNA 5 末端 特征 结构 3 .* 4 J

1 RNA 细胞 生物

tRNA 详细 研究 结构 作用 程度 RNA 结构 结构 ,都 标准 形成 贡献 9。 实验 操作 需要 实验 破坏 RNA 结构 否则 RNA 相关 实验 造成 严重 负面 影响 文中 讨论

1.4 RNA

通常 转录 RNA 转录 转录 核糖 RNA (rRNA), 转移 RNA (tRNA) 均一 RNA (hnRNA), {Aff RNA (mRNA) RNA。 RNA RNA 聚合 合成 细胞 行使 功能 繁多 RNA 群体 细胞 相同 RNA 直接 细胞 生化 状态

rRNA 转录 品种 细胞 主要 rRNA 品种 23S rRNA, 16S rRNA 5S rRNA。 主要 28S rRNA, 18S rRNA, 5S rRNA 转录 5. 8S rRNA。 核糖 脚手架 它们 70 蛋白 具有 蛋白 核糖 功能 活性 核糖 存在 基因 表达 调控 。rRNA 使 电泳 标记 COLES 10 )。

tRNA 承担 氨基 核糖 蛋白质 。tRNA 携带 100 74~95 tRNA 3 末端 连接 方式 携带 氨基 tRNA。 mRNA 编码 COL 3 ), 3 密码 tRNA 互补 方式 识别 mRNA, 使 正确 氨基 进入 tRNA 密码 蛋白质 延伸 Lewin 综述 ,2004)。tRNA 修饰 尿 mie OW), EME HE FAR EDS a Ik. NR AY. GUA GY, BR tR- NA rRNA tRNA 翻译

mRNA 转录 均一 RNA。 讽刺 意义 mRNA 决定 细胞 作用 。mRNA 通过 利用 rRNA tRNA 翻译 装置 单独 指导 蛋白质 合成 mRNA 数量 变化 mRNA 细胞 拷贝 mRNA 细胞 拷贝 细胞 功能 mRNA 剪接 修饰 均一 RNA (ChnRNA), 兴趣 RNA。

1.5 影响 核酸 结构

核酸 实际 动态 变化 实验 变化 核酸 互补 形成 稳定 操作 实验 具有 促进 阻止 形成 需要 实验 使 形式 形式 接受 术语 “严谨 ”, 描述

© 标准 : G-C A-U; 标准 : A-C, G-U, U-U, G-G, A-w, G-v, A-A-U

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

正确 操作 状态 测定 核酸 核酸 测定 哪些 互补 互补 严谨 互补 核酸 认为 行为 严谨 利于 核酸 精确 配对 序列 稳定 杂交 系统 严谨 非特 比例 意味 容忍

促进 阻止 核酸 杂交 体外 操作 因素 PH、 离子 强度 酰胺 Ge 1. 3)。 重要 事实 : 变量 实际 行使 相当 功能 ;其 瞬间 完成 转换 质量 数目 ) 互补 程度 影响 任何 稳定 变量 进行 操作 微调 核酸 互补 互补 状态

1.3 影响 核酸 结构 因素

严谨 严谨 | 严谨 严谨 低温 酸性 pH pH

: 环境 促进 形成 ; 严谨 增加 倾向 酰胺 温度 维持 严谨

试图 改变 温度 方法 获得 环境 温度 提高 危及 RNA DNA 稳定 温度 排除 潜在 严重 问题 酰胺 溶剂 构建 温度 严谨 危及 核酸 完整 酰胺 主要 通过 干扰 形成 降低 温度 (Ta )。 Tu 认为 平衡 温度 50 严谨 交通 Ta 温度 进行 保证 杂交 完全 酰胺 进行 严谨 需要 温度 研究 实验 参数 选择 自由

调节 严谨 酰胺 使 状态 复杂 ; 另外 存在 相同 简单 方法 提高 降低 浓度 降低 系统 温度 核酸 混合 严谨 利于 促进 形成 严谨 利于 促进 形成 讨论 相关 变量 精确 贡献 细节 14

1.5.1 严谨 影响

生理 状态 离子 强度 10~20mmol/L 实验 系统 核酸 静电 排斥 阻止 互补 形成 单价 阳离子 浓度 静电 排斥 抗衡 离子 单价 阳离子 Nat. KY. Lit, ENEMA HH 磷酸 骨架 静电 排斥 排斥 利于 细胞 阳离子 蛋白 核酸 负电 阻止 正确 变性

1.5.2 pH 严谨 影响

pH 影响 核酸 离子 程度 生理 pH °6-

1 RNA 细胞 生物

离子 状态 互补 生理 pH 环境 导致 核酸 核酸 (dsDNA) pH5 酸性 环境 非常 危险 反应 “〈 降解 ) 生理 pH 环境 增加 磷酸 排斥 超过 动力 稳定 实验 广 使 NaOH 变性 DNA, 进行 RNA 实验 RNA 极其 敏感 RNA 暴露 环境 (pH>8.6) 破坏

1.5.3 温度 严谨 影响

通常 温度 作用 作用 相反 动力 稳定 5SEK AWM 〈G C) 含量 STAR. MER 尿 间或 胸腺 2 Th 容易 核酸 温度 事实 作证 : 1C 变化 轻易 影响 工作 BE BARA PCR 引物 工作 工作 因为 计算 动力 参数 1C 杂交 洗涤 精确 实验 参见 14 PCR GI WN RAH 19 讨论

1.5.4 酰胺 严谨 影响

Tm 决定 数量 CGC) 含量 100 系统 稳定 系统 温度 极其 敏感 需要 非常 温度 才能 维持 相应 严谨 计算 杂交 温度 14 ) 任何 环境 允许 形成 温度 情况 酰胺 达到 降低 Tm 维持 严谨 目的 严谨 环境 使 足以 允许 形成 温度 保证 杂交 忠实 排除 极端 温度 增加 1 酰胺 使 Tu 0. 75°C.

16

除了 重组 DNA 方法 技术 事实 杂交 技术 主要 工具 杂交 技术 促使 互补 核酸 形成 方法 体外 系统 技术 允许 混合 DNA RNA 鉴定 回收 特异 F— PCR 技术 关键 核心 情况 同义词 使 :

FRE

形成

退火

明确 认识 形成 仅仅 功能 核糖 脱氧 核糖 相干 ”是 非常 重要 因为 生物 使 任意 互补

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

BH IB BET BME 1.4 1.4

(a Wt DNA dsDNA,DNA + DNA RNA: RNA DNA? RNA #4 DNA: RNA

动力 ,dsDNA 稳定 ,DNA : RNA 相对 稳定 稳定 互补 RNA 形成 体内 系统 原先 认为 RNA 主要 形式 存在 事实 RNA 广泛 存在 配对 实验 操作 RNA 允许 非常 严谨 杂交 洗涤 RNA 作为 提高 实验 方法

1.7 &B#A x &

Lewin, B. (Ed.). (2004). “Genes VIII.” Pearson Education, Upper Saddle River, NJ.

Lodish, H., Berk, A., Matsudaira, P., Kaiser, C. A., Krieger, M., Scott, M. P., Zipursky, S. L., and Darnell, J. (Eds.). (2004). “Molecular Cell Biology,” Sth ed. W. H. Freeman and Co., New York.

Malacinski, G. M. (2003). “Essentials of Molecular Biology,” 4th ed. Jones and Bartlett Publishers, Sudbury, MA.

Weaver, R. F. (2002). “Molecular Biology,” 2nd ed. McGraw Hill Publishers, New York.

Zamenhof, S., Brawermann, G., and Chargaff, E. (1952). On the desoxypentose nucleic acids from several organisms. Biochim. Biophys. Acta 9, 402-405.

( ; Sew)

2 转录

2.1 转录

根据 生物 @, 信息 基因 序列 CDNA), 信使 RNACmRNA) 功能 形成 (图 2.1)。 适用 原核 细胞 细胞 观察 复制 ed 符合 现象 : @ 转录 病毒 RNA DNA RAAB).

DNA

病毒 基因 RNA 通过 DNA 复制 RR* | 转录 目的 病毒 序列 整合 宿主 基因 (构建 cDNA) ) 进行 病毒 活性 生产 途径 ),@) RNA 编辑 (Benne ,1986; Chan | sai Nishikura, 48, 1997), LA RNA 序列 蛋白 闻名 改变

Brno (当时 属于 CE aie: ) 罗马 主教 牧师 基因 wo 进行 遗传 杂交 结果 mRNA, 蛋白 “因子 ”, 世代 DNA 倍增 细胞 周期 世代 完全 S DNA 体外 测定 转录 活性 清楚 表达 50 遗传 物质 物质 基因 表达 调控 方面 平行 科学 调查

转录 DNA 特定 序列 ) 合成 RNA RNA 生物 合成 步骤 细胞 线粒体 绿 ) 原核 细胞 共有 细胞 间隔 基因 表达 潜在 控制 转录 单位 DNA 序列 包括 适当 转录 终止 支持 初始 RNA 转录 合成 命名 因为 信息 相同 语言 语言 ) DNA 转移 RNA。 命名 因为 核酸 mRNA 形式 指导 氨基 指导 蛋白 语言 执行 细胞 细胞 ; 修饰 通过 它们 正确

mRNA

@ He Boe F 1957 实验 生物 讨论 提出

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

2.1.1 调控

转录 RNA 聚合 催化 识别 庞大 复杂 基因 DNA 非常 特别 启动 序列 基因 结构 结合 2.2), 识别 模块 序列 通常 共有 序列 术语 通常 表示 特殊 序列 模式 调控 序列 精确 几何 构象 促进 阻止 转录 进行 效率 工作 转录 (transcription start site, TSS) 5 转录 实际 符号 “一 ”表示 转录 定义 “十 1”, 转录 3 任何 实际 符号 “十 ”表示 序列 知识 主要 DNA 克隆 技术 突变 、DNA 实验

2 We, SHAE

a |

细胞 功能

2.2 基因 编码 蛋白质 信使 RNA (mRNA) 直接 启动 调控 控制

原核 系统 包括 10 Fee, Be TATAAT 共有 序列 Pribnow &. 保守 35 序列 (TTGACA)。 物种 & AT 结构 10 序列 35 序列 距离 严格 距离 变化 减弱 RNA 聚合 相互 作用

相应 TATA Hogness &, MANHRARE AREY 胸腺 认为 启动 表现 TATA 事实 缺乏 TATA 启动 〈down- stream promoter element,DPE) 转录 30 30)。 TATA DPE 启动 CAAT 基因 基因 命名 因为 序列 保守 。TATA 30 K, CAAT 75 CAAT 控制 RNA 聚合 结合 选择 转录 常见 启动 G Bek GCG [(GGGCGG),]。GC 启动 90 120 拷贝 ATGCAAAT Fil 互补 序列 ATTTGCAT, 启动 序列 影响 RNA 聚合 转录 效率 因子 转录 结合 因子 转录 功能 启动 没有 统一 特殊 排列 它们 距离 识别 转录 调控 依据

Sains s

#28 基因 转录

原核 细胞 转录 比较 转录 需要 转录 因子 结合

启动 工作 转录 序列 显著 影响 作用 显然 促进 转录 基因 序列 启动 精确 方向 相同 基因 序列 免疫 蛋白 基因 ), 基因 结构 增强 增强 序列 降低 转录 效率 基因 增强 序列 增加 增强 方向 TSS )。 体内 导致 启动 基因 接近 造成 正确 基因 灾难 结果 增强 启动 影响 充分 作用 清楚

2.1.2 DNA 模板

转录 转录 基因 任务 RNA 聚合 模板 作用 模板 模板 作用 编码 98。 编码 序列 5' 3", 含义 模板 3 5 平行 编码 命名 因为 精确 顺序 模板 模板 序列 互补 重要 启动 改变 模板 改变 现象 典型 例子 启动 克隆 DNA, 启动 SP6、T3 T7。 克隆 构建 转录 正义 RNA Al RNA, 13 )。

Ze, we OG ae, AS

理解 转录 产物 意义 基因 原核 基因 包装 编码 同一 代谢 途径 蛋白 基因 操纵 形式 〈Jacob Monod,1961) 。yzac 操纵 基因 产物 参与 作为 乳糖 代谢 例子 RNA 操纵 单一 RNA 转录 编码 ) 转录 mRNA 编码 信息 编码 序列 没有 信息 隔断 方式 生物 达到 利用

事实 上, 原核 基因 表达 动力 细菌 mRNA RRR. MMS 几乎 同时 进行 固有 使 克隆 原核 mRNA 想法 实现 阳性 RNA 方面 取得 巨大 进步 试剂 形式 提供 使 原核 RNA 仍然 挑战

原核 系统 相反 mRNA 特定 mRNA 翻译 相同 mRNA 重复 翻译 转录 仍然 具有

@ 编码 正义 . 11 e

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

活性 潜力 ,mRNA 转录 常常 同时 核糖 结合 单个 转录 依次 翻译 mRNA 核糖 结合 核糖 . 原核 系统 系统 定时 结合 核糖 mRNA 核糖 核糖 鉴定 评估 细胞 限定 实验 翻译 单个 mRNA 制造

仔细 检查 基因 基因 直接 指导 合成 必需 氨基 序列 DNA 序列 基因 差异 mRNA 。mRNA 通常 编码 DNA 序列 矛盾 基因 解释

D mRNA DNA 没有 编码 功能

@ 转录 存在 mRNA DNA 系统 RNA 初始 转录 剪接 除去 使 邻近 序列 连接 指导 合成 线 RNA 例外 Tereba, 1985; Cech Bass,1986 综述 )

基因 数量 取决 基因 变量 进化 往往 生物 编码 100 S$ REM. ERAS, BAW 保守 序列 生物 相关 基因 序列 显著 阅读 终止 密码 预料 因为 利于 突变 积累 突变 序列 的。 特殊 例子 P- 缺失 序列 (Tavernier ,1981) 检查 剪接 连接 现在 含有 严格 保守 序列 (Breathnach Chambon, 1981; Mount,1982) 5 MAA GU FH, WAG ER; 相信 现象 100%,

5' 一直 1| GU WaF AG | sree 2 | 3

直接 邻近 边界 保守 〈65% 75%)。 剪接 突变 造成 现象 基于 辨别 序列 方法 捕获 (Duyk ,1990) 推测 序列 克隆 特殊 载体 DNA 载体 连接 转录 Northern 转录 例子 剪接 突变 利用 剪接 产生 异常 mRNA。 剪接 通常 例子 〈Triesman ,1982) 例子 B- 贫血 打上 基因 生物 常见 现象 适合 线粒体 绿 体位 适合 酵母 tRNA 基因 (Lewin, 2004).

ASTRA BH) 实际 RNA

© 描述 - 剪接 AG-GT 规则 DNA 合成 转录 5 末端 GU. e 12 °

2 基因 转录

RNA- 白质 复合 形式 存在 U1、U2、U4、U5 U6, 定位 (snRNP snurps) 。Hamm Mattaj (1990) 首先 描述 必要 剪接 因子 方法 细胞 RNA (scRNA seyrps) snRNA scRNA 存在 RNA- 蛋白 。scRNA 调控 蛋白 白质 mRNA 降解 作用 兴趣 领域 RNA (snoRNA) 核糖 RNA (rRNA) 生物 合成 相关 “〈Kass ,1990) 切除 通过 RNA RNA Cech (1981) 首先 描述 使 RNA 生物 信息 描述 : Michel Ferrat,1995; Wilson Szostak, 1999; Kurreck, 2003; Lewin,2004)

转录 直接 产物 RNA 序列 DNA 序列 精确 相关 转录 功能 RNA RNA 均一 RNA (hnRNA), hnRNA 特定 蛋白 形成 均一 核糖 “hnRNP), :, Dreyfuss ,2002) mRNA 形成 作为 编码 蛋白 模板 功能 必须 首先 除去 序列 RNA AZ 修饰 随后 转录 输出 细胞 mRNA 保留 降解

2.3 RNA 转录 产物

转录 基因 RNA 聚合 产生 RNA 主要 rRNA, tRNA mRNA, 稀有 RNA。 基因 RNA 聚合 催化 属于 蛋白 相应 原核 RNA 聚合 RNA Rei RNA 聚合 I 、RNA RAHI A RNA 聚合 负责 同类 基因 转录 2. 1) RNA 聚合 转录 主要 RNA。RNA 聚合 存在 DNA 活性 需要 ATP. CTP, GTP UTP 同时 需要 Mg2+ 作为 辅助 因子 RNA 聚合 转录 产物 它们 真菌 毒素 (cA MH?) 敏感 (Roeder, 1976; Marzluff Huang, 1984) 17

2.1 RNA 聚合 产物 o- 敏感

RNA ¥4 iif I rRNA(28S,18S,5. 8S) = RNA #4 fi I pre-mRNA-> mRNA RNA #4 Af Ill tRNA,5S rRNA,snRNA

: mRNA 信使 RNA; rRNA 核糖 RNA;,snRNA RNA;, tRNA 转移 RNA,

RNA 转录 5 3 方向 聚合 :

@ A ee a Amanita phalloides 13 .

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

书籍 详细 描述 包括 RNA 聚合 借助 帮助 DNA 模板 启动 结合 RNA 因子 参与 RNA 合成 完成 产物 提早 合成 RNA Al RNA 聚合 模板 延伸 受到 蛋白 ) 影响 突变 合成 RNA 编码 DNA 序列 命运 3 EEA PG

rRNA 基因 转录 RNA 聚合 催化 生物 RNA 聚合 转录 初始 产物 剪接 45S RNA, 28S rRNA, 18S rRNA、 5.8S rRNA (图 2.3)。RNA 聚合 转录 tRNA 基因 ,5S rRNA、 重复 (Fornace Mitchell, 1986; Lewin, 2004) snRNA, sn- oRNA, scRNA

2.3 细胞 rRNA 生物 合成 。RNA 聚合 〈45S 转录 ) 28S、18S 5.8S。5S rRNA RNA 聚合 转录 引用 Lewin, Gene Vi 〈1997) 牛津 允许

典型 哺乳 动物 细胞 1X10“ 5X10 Pg HK RNA, HRP KBD ERA MBI MRA Ae Tee RA. A 80% ~85% WY ANd RNA 28S rRNA、18S rRNA、5.8S rRNA 5S rRNA 形式 存在 核糖 RNA 核糖 蛋白 形成 复合 (60S 40S 核糖 )。 10 描述 28S rRNA 18S rRNA 作为 细胞 RNA 细胞 RNA 电泳 标准 2.2 原核 细胞 核糖 生物 功能 比较 。tRNA 构成 细胞 RNA 质量 10% ~15%, TARA mRNA 细胞 RNA WN 1%~4%.

2.2 原核 细胞 转录 翻译

原核 细胞 细胞 —SS SS eee T 基因 ( 模式 ) ,一 几乎 ,叶绿体 5 间隔 转录 | mRNA 半衰期 2 10h, :1 24h 转录 速度 40 BE MR 40 BEER 转录 修饰 几乎 没有 广泛 ,包括 5 .多

2 基因 转录

原核 细胞 1. 2kb 1. 9 2. 2kb

= m

mRNA 平均 rRNA

核糖

完整 核糖 70S 80S

间隔 细胞

翻译 速度 15 ASR 5 8 BIER 翻译 修饰 几乎 没有 修饰

YE: mRNA 信使 RNA; rRNA 核糖 RNA,

FRE, rRNA 首先 认为 蛋白 合成 模板 。I4 噬菌体 感染 研究 指出 mRNA 独立 RNA, 蛋白 模板 作用 CVolkin Astra- chan, 1956; Brenner ,1961; Hall #1 Spiegelman,1961)。 SV40 mRNA (Ghosh ,1978) mRNA (1979) 5 末端 BL RNA 聚合

RNA 聚合 [和 RNA 聚合 转录 功能 变化 变化 RNA 聚合 转录 产物 生化 状态 变化 变化 意外 因为 mRNA 决定 细胞 细胞 状态 ,RNA 聚合 产物 差异 20% 40%, mRNA 1% 4%。 Cot 动力 转录 功能 mRNA 基因 基因 重复 序列 基因 认为 转录 细胞 周期 细胞 基因 细胞 生物 复杂 ,mRNA 群体 满足 细胞 生存 需要 必要 转录 hnRNA 70% 降解 研究 基因 表达 转录 调控 提供 基础

23S、16S、5S 28S\18S、5. 8S,5S

50S,30S 60S,40S

2 i

2.4 参考 文献

Benne, R., van den Berg, J., Brakenhoff, J. P., Sloof, P, Van Boom, J. H., and Tromp, M. C. (1986). Major transcript of the coxII gene from trypanosome mitochondria contains four nucleotides that are not encoded in the DNA. Cell 46, 816.

Breathnach, R., and Chambon, P. (1981). Organization and expression of eukaryotic split genes coding for proteins. Ann. Rev. Biochem. 50, 349.

Brenner, S., Jacob, F., and Meselson, M. (1961). An unstable intermediate carrying infor- mation from genes to ribosomes for protein synthesis. Nature 190, 576.

Cech, T. R., and Bass, B. L. (1986). Biological catalysis by RNA. Ann. Rev. Biochem. 55, 599.

Cech, T. R., Zaug, A. J., and Grabowski, P. J. (1981). Jn vitro splicing of the ribosomal RNA precursor of Tetrahymena: Involvement of a guanosine nucleotide in the excision of the intervening sequence. Cell 27, 487.

Chan, L., and Nishikura, K. (1997). Mammalian RNA Editing. Jn “mRNA Metabolism and Post-Transcriptional Gene Regulation” (J. B. Harford and D. R. Morris, Eds.). Wiley-Liss, New York.

15

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Crick, F. (1957). On protein synthesis. Paper presented to The Society for Experimental Biology.

Dreyfuss, G., Kim, V. N., and Kataoka, N. (2002). Messenger-R NA-binding proteins and the messages they carry. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3, 195.

Duyk, G. M., Kim, S., Myers, R. M., and Cox, D. R. (1990). Exon trapping: A genetic screen to identify candidate transcribed sequences in cloned mammalian genomic DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. 87, 8995.

Flavell, A. J., Cowie, A., Legon, S., and Kamen, R. (1979). Multiple 5’ terminal cap struc- tures in late polyoma virus RNA. Cell 16, 357.

Fornace, A. J., Jr., and Mitchell, J. B. (1986). Induction of B2 RNA polymerase III tran- scription by heat shock: Enrichment for heat shock induced sequences in rodent cells by hybridization subtraction. Nucleic Acids Res. 14, 5793.

Ghosh P. K., Reddy, V. B., Swinscoe, J., Lebowitz, P., and Weissman, S. M. (1978). Heterogeneity and 5’ terminal structures of the late RNAs of simian virus 40. J Mol. Biol. 126, 813.

Gros, F., Hiatt, H., Gilbert, W., Kurland, C. G., Risebrough, R. W., and Watson, J. D. (1961). Unstable ribonucleic acid revealed by pulse labelling of Escherichia coli. Nature 190, 581.

Hall, B. D., and Spiegelman, S. (1961). Sequence complementarity of T2 DNA and T2-spe- cific RNA. Proc. Natl. Acad. Sci. 47, 137.

Hamm, J., and Mattaj, I. W. (1990). Structural Analysis of U small nuclear ribonucleo- proteins by in vitro assembly. Methods Enzymol. 181, 273.

Jacob, F., and Monod, J. (1961). Genetic regulatory mechanisms in the synthesis of pro- teins. J. Molec. Biol. 3, 318.

Kass, S., Tyc, K., Steitz, J. A., and Sollner-Webb, B. (1990). The U3 small nucleolar ribonu- cleoprotein functions in the first step of preribosomal RNA processing. Ce/l 60, 897.

Kurreck, J. (2003). Antisense technologies. Improvement through novel chemical modifi- cations. Eur. J. Biochem. 270, 1628.

Lewin, B. (Ed.). (2004). Genes VIII. Pearson Education, Upper Saddle River, NJ.

Marzluff, W. FE, and Huang, R. C. C. (1984). Transcription of RNA in isolated nuclei. Jn “Transcription and Translation: A Practical Approach” (B. D. Hames and S. J. Higgins, Eds.). IRL Press, Washington, DC, pp. 89-129.

Michel, F., and Ferrat, J. L. (1995). Structure and activities of group II introns. Ann. Rev. Biochem. 64, 435.

Mount, S. M. (1982). A catalogue of splice junction sequences. Nucleic Acids Res. 10, 459.

Roeder, R. G. (1976). Jn “RNA Polymerase” (R. Losick and M. Chamberlain, Eds.). Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, pp. 285-329.

Tavernier, J., Derynck, R., and Fiers, W. (1981). Evidence for a unique human fibroblast interferon (IFN-B,) chromosomal gene, devoid of intervening sequences. Nucleic Acids Res. 9, 461.

Tereba, A. (1985). Chromosomal localization of protooncogenes. Jnt. Rev. Cytol. 95, 1. Triesman, R., Proudfoot, N. J., Shander, M., and Maniatis, T. (1982). A single-base change at a splice site in a B°-thalassemic gene causes abnormal RNA splicing. Cell 29, 903. Volkin, E., and Astrachan, L. (1956). Phosphorus incorporation of E. coli ribonucleic acid

after infection with bacteriophage T2. Virology 2, 146.

Wilson, D. S., and Szostak, J. W. (1999). Jn vitro selection of functional nucleic acids. Ann.

Rey. Biochem. 68, 611.

;人 )

基因 RNA 聚合 均一 RNA(ChnRNA) 代谢 细胞 ,mRNA hnRNA 通过 系列 修饰 反应 包括 5 、3 末端 细胞 1% 3 RNA mRNA。 根据 细胞 mRNA 特殊 mRNA 正式 mRNA WR: 的、 mRNA。

转录 细胞 拷贝 细胞 产生 特定 蛋白 执行 功能 产生 转录 转录 细胞 基因 9 mRNA 数量 mRNA 细胞 10 拷贝 技术 Northern 12 ), 检测 mRNA。 方法 增加 概率 mRNA mRNA 细胞 1 拷贝 迫使 取代 细胞 观察 特殊 基因 转录 mRNA 认为 隆基 重要 必须 认识 RNA Y= 变化 变化 细胞 环境 自然 变化 实验 操作 原因

3.1 &2# MRNA 拓扑 结构

典型 纤维 细胞 1 〈pg) mRNA, 相当 3 4 10° mRNA 反映 mRNA 编码 蛋白 同等 典型 mRNA mRNA 拓扑 特征 32 Dg

3.1.1 5' het

mRNA RNA 聚合 产生 mRNA。 产物 hnRNA 5 末端 结构 : 5 pppPuNNN……- 3: 转录 含有 完整 5 -三 磷酸

@ 基因 编码 蛋白 维持 细胞 活力 正常 功能 表达 通常 认为 细胞 功能 状态 改变 改变 作为 定量 实验 参照 20 ° 17°

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

终止 密码 UAA, UAG, UGA poly(A) sway A AAAAAAAAA3/ AUG AAUAAA 密码 poly(A)

3.1 典型 mRNA 拓扑

磷酸 5 -3 连接 超过 100 ,5 ' 结构 (Reddy ,1974; Shatkin, 1976; Banerjee, 1980) 逐步 装配 (Babich ,1980)。 少见 5 -5 磷酸 转录 7- (m’G) RRB MK. ERAN —Ti— SIKH RB MHEIKT. AmH SRR KA RMARR DH 5 末端 结构 : 5'GpppPuNNN.……- 3. AR Shin RS FRA 5 -5 Fp RHE RA TREE. 5! BAS Oia {7 BS ER -7- FA SE FE. FE a) 9 ER A: m’G(5')ppp(5') Pu mRNA 接着 2 -O- 催化 2 - mRNA, 4 反应 5 SERRARU 倒数 /或 核糖 包括 NOFA SE AR ER RE, HY mRNA mRNA mRNA 生物 合成 早期 RNA ,Ns- 保守 〈Shatkin,1976; Chen-Kiang ,1979) 程度 mRNA 功能 通常 帽子 。snRNA 帽子 结构 〈Furuichi Shatkin, 1989), S- (SAM).

5 帽子 伴随 细胞 基因 表达 转录 修饰 例子 mRNA .

。5 帽子 支持 翻译 重要 体外 转录 mRNA 希望 转录 支持 编码 蛋白 合成 必须 进行 体外 形成 帽子 结合 蛋白 “〈 Shatkin 综述 ,1985; Dreyfuss, 1986; Lewin,2004)。 因子 核糖 识别 翻译 转录 ,rRNA tRNA 没有 帽子

帽子 显然 通过 磷酸 5 > 3 核酸 降解 方式 转录 稳定 (Furuichi 4, 1977; Furuichi Shatkin,1989) mRNA 没有 5 帽子 结构 mRNA 翻译 ,mRNA 5 核酸 降解 线 绿 mRNA 没有 5 帽子 细胞 复制 动物 病毒 mRNA 含有 5 帽子 注意 EY) FF a IK J FR: PFI Jb

3.1.2

结构 开始 翻译 正规 ° 18 -

3 fate RNA

5 CUTR)。 3 30 50 含义 翻译 扫描 模型 ,40S 结合 5 帽子 沿 移动 AUG 密码 。AUG 密码 编码 结合 蛋白 5 帽子 40S 结合 功能 核糖 装配 因子 Celfs) mRNA 44807 (Leibold Munro, 1988; Dever, 2002).

3.1.3 编码

编码 mRNA 结构 AUG 密码 密码 ) 开始 细胞 少数 翻译 AUG 密码 (Hann ,1988; Florkiewcz Sommer, 1989); 相反 蛋白 倾向 GUG AUG the. Wot, CALE 密码 需要 “好 ”*。 研究 认为 AUG 密码 必须 A (Kozak, 1986), WEA, AUG 直接 G, 翻译 模块 认为 密码 标记

编码 开始 AUG 密码 使 白质 氨基 原核 蛋白 氨基 密码 延伸 延宕 〈(Woolin Walter,1988) 方式 持续 终止 (无 ) BF CUAA, UAG K UGA) 校正 tRNA 变种 为止 密码 翻译 终止 正常 信号 ,mRNA 编码 5 末端 mRNA 翻译 产物 氨基 ,3 末端 羧基 mRNA 编码 200~1500 HARK mRNA 编码

3.1.4 尾部 序列

终止 密码 尾部 序列 3`UTR 序列 通常 50 150 1000 UTR 报道 mRNA 编码 相同 差异 3 UTR 叶酸 mRNA)。 3`UTR 功能 清楚 相信 影响 mRNA 细胞 稳定 必须 注意 3'UTR 合成 30 保守 AAUAAA 序列 (Proud- foot Brownlee,1976 )

3.1.5 BREE

mRNA 3 末端 特征 (Lim Cannelakis, 1970; Edmonds ,1971), 结构 poly(A) 尾巴 精确 指示 细胞 mRNA 翻译 状态 功能 (Kuge Richter, 1995; Baker 综述 ,1997) 。hnRNA 转录 细胞 poly(A) poly(A) 结构 3 poly(A) 知道 poly(A) 聚合 poly(A) 聚合 ATP 非常 需要 AMP 结合 3 -游离 羟基 mR.

具有 mRNA poly(A) mRNA。 超过 97% HAKB mRNA

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

具有 poly(A), 细胞 mRNA 没有 poly(A) 主要 编码

蛋白 mRNA。 酸化 抑制 98, 正常 poly(A) mRNA hnRNA 产生 poly(A) mRNA 细胞 细胞 运输 必需 没有 poly(A) &A mRNA 需要 替代 方式 基于 蛋白 mRNA 特有 ,mRNA 通过 蛋白质 形成 蛋白 复合 mRNA CAT REA) 开始 翻译

观察 mRNA 调控 作用 poly(A) 稳定 mRNA 方面 调控 翻译 效率 方面 作用 。mRNA 特殊 5 特征 3 特征 保护 降解 5 末端 /或 3 末端 序列 信息 细胞 影响 降解 (Jackson Standar, 1990; Spirin, 1994; Standart Jackson, 1994; Curtis ,1995 )

转录 显然 终止 酸化 终止 CBN 3 方向 ) 病毒 系统 观察 现象 (Nevins Darnell,1978; Fraser ,1979) 酸化 实际 初始 转录 尾部 通过 严格 控制 ,poly(A) 尾巴 直接 3 酸化 效率 程度 取决 保守 AAUAAA 模块 poly(A) 信号 酸化 比较 保守 GU 序列 序列 精确 序列 保守 程度 指导 hnRNA AAUAAA 信和 3 -羟基 聚合 poly(A)。 转录 修饰 核糖 (snRNP) 〈Birnstiel ,1985; Berget Robberson, 1986; Black Steitz, 1986; Hashimoto Steitz, 1986).

酸化 信号 重要 容易 〈Fitzgenald Shenk, 1981; Manley 1985); 自发 变异 突变 空间 显示 严重 干扰 poly(A)* mRNA HH 酸化 信号 虽然 保守 相同 观察 酸化 信和 (AUUAAA) 存在 溶菌 mRNA (Jung ,1980) 病毒 mRNA (Ahmed ,1982),AAUAUA 序列 存在 胰腺 -淀粉 mRNA 稀有 〈Tosi ,1981) 进而 寿命 mRNA 模块 (AUUUA) 现存 肿瘤 基因 细胞 因子 转录 . (Shaw Kamen,1986) ARE ( AU ) 序列 稳定 mRNA 认为 促进 mRNA 降解 序列 尾部 串联 重复 。ARE sp & SWART Rk. BD poly(A) 尾巴 切除 稳定 接着 核酸 mRNA 降解 酸化 调控 原核 mRNA 稳定 HE (O’Hara ,1995 )

虽然 酸化 信号 酸化 转录 poly (A) 尾巴 细胞 作用 poly(A) 生理 作用 poly(A) 结合 蛋白 〈polyade- nylate-binding protein,PABP)@ 生理 作用 清楚 明确 poly(A) mRNA 稳定 翻译 效率 相互 关系

@ HAR (3 -脱氧 ) 酸化 (Zeevi ,1982), 干扰 转录 干扰 hnR- NA 合成 @ PABP 鉴定 方法 参见 Sachs Al Kornberg (1990) Gorlach (1994)

. 20 .

3 信使 RNA

3.1.6 细胞 mRNA

线粒体 叶绿体 它们 自己 遗传 它们 独立 细胞 细胞 基因 别称 mtDNA ctDNA。 线 叶绿体 基因 编码 蛋白 定位 细胞 输入 基因 编码 蛋白 支持 正常 细胞 生理 活动

转录 翻译 保守 细胞 mRNA 品种 存在 结构 线粒体 mRNA 存在 5 帽子 结构 3 酸化 细胞 转录 线 mRNA 通常 使 AUA AUU 作为 通常 靠近 5 末端 结构 角度 母线 mRNA 线粒体 mRNA 接近 细胞 mRNA。

3.2 细胞 稳定

细胞 核糖 核糖 体形 mRNA 信使 核糖 蛋白 C(mRNP) 复合 存在 核糖 体贴 细胞 骨架 〈Lenk ,1977; Howe Hershey, 1984) 结合 翻译 必需 。poly(A) 尾巴 稳定 mRNA 作用 使 poly(A) 缩短 导致 稳定 - (Decker Parker, 1994; Beela- man Parker,1995)。 除去 蛋白 poly(A), 快速 降解 ,mRNA 迅速 失去 翻译 活性 (Huez ,1974;, Marbaix ,1975)。 3 ARE 作用 缺失 降低 速度 延长 mRNA 寿命 〈Wilson Treisman, 1988; Shyu ,1991; Decker Parker, 1993; Chen Shyu,1994)。 显示 ,5 UTR 3'UTR 转录 稳定 知道 作用 (SRR IL Lewin,2004)

3.3 @ 12 K F

历史 病毒 SV40 进行 实验 (Nevins 综述 ,1983) 显露 生化 反应 生物 功能 mRNA 合成 联系 曾经 相信 mRNA 研究 显示 NA 形成 结构 结构 RNA 结合 蛋白 转录 转录 行为 细胞 调控 数量 非常 广义 调控 主要 (图 3. 2): 转录 调控 ;转录 调控 ;翻译 调控 ;翻译 调控

RNA 转录 细胞 初始 调控 那里 RNA 正确 修饰 剪接 序列 转运 综述 独特 - 转运 细节 (Pinol-Roma Dreyfuss, 1993; Maquat, 1997), EGR mRNA 移动 通过 复合 细胞 mRNA 翻译 装置 结合 翻译 装置 结合 上, 细胞 RNA 稳定 基因 表达 调控 重申 重要 mRNA 进入 核糖 mRNA: 蛋白质 复合 翻译 调控 “信息 描述 mRNA: 蛋白质 (Preobrazhensky Spirin, 1978; Bag,

a

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

3.2 细胞 关键 调控 细胞 基因 编码 信息 开始 通过 mRNA 生物 合成 作为 功能 蛋白 表现 正文

1991) mRNA 确实 翻译 初始 产物 通常 翻译 修饰 切除 信号 序列 常见 翻译 修饰 限于 ) 酸化

任何 影响 转录 效率 阻止 转录 变化 作用 转录 )。 影响 hnRNA 剪接 、hnRNA 稳定 - 转运 细胞 稳定 事件 转录 作用 (转录 ), 事件 培养 哺乳 细胞 mRNA mRNA 半衰期 10min 短暂 常常 基因 表达 显著 影响 mRNA 稳定 (Buckingham ,1974; Baumbach ,1984; Knight ,1985)。 翻译 调控 ,通常 暗示 细胞 mRNA 蛋白 合成 程度 受到 VEEN THE.

显然 群体 生化 状态 定量 定性

定义 细胞 破碎 mRNA 复杂 函数 研究 希望 确定 模式 系统 基因 表达 调控 转录 调控 转录 事件 情况 破碎 RNA 纯化 方法 必须 允许 进行 基因 转录 细胞 影响 同样 进行 单独 细胞 研究 细胞 支持 转录 延伸 进行 同位 标记 17 )。 ,RNA 生物 样品 纯化 确保 RNA 稳定 保证 整个 核糖 核酸 状态 即使 必需 细节 常常 RNA 决定 因素

3.4 参考 文献

Ahmed, C. M. I., Chanda, R. S., Snow, N. D., and Zain, B. S. (1982). The nucleotide sequence of mRNA for the M, 19000 glycoprotein from early gene block III of aden-

ovirus 2. Gene 20, 339.

Babich, A., Nevins, J. R., and Darnell, J. E. (1980). Early capping of transcripts from the adenovirus major late transcription unit. Nature 287, 246.

Bag, J. (1991). mRNA and mRNP. /n “Translation in Eukaryotes,” pp. 71-79. CRC Press, Ft. Lauderdale, FL.

Baker, E. J. (1997). mRNA polyadenylation: Functional implications. In “mRNA Metabolism and Post-Transcriptional Gene Regulation” (J. B. Harford and D. R. Morris, Eds.). Wiley-Liss, New York, pp. 85-106.

Banerjee, A. K. (1980). 5’-terminal cap structure in eucaryotic messenger ribonucleic acids. Microbiol. Rey. 44, 175.

ws 22 -

3 信使 RNA

Baumbach, L. L., Marashi, ,Plumb,M., Stein, G., and Stein, J. (1984). Inhibition of DNA replication coordinately reduces cellular levels of H1 histone mRNAs require- ment for protein synthesis. Biochemistry 23, 1618.

Beelman, C. A., and Parker, R. (1995). Degradation of mRNA in eukaryotes. Ce// 81, 179.

Berget, S. M., and Robberson, B. L. (1986). U1, U2, and U4/U6 small nuclear ribonucleo- proteins are required for in vitro spicing but not for polyadenylation. Ce// 46, 691.

Birnstiel, M. L., Busslinger, M., and Strub, K. (1985). Transcription termination and 3’ end processing: The end is in site! Ce// 41, 349.

Black, D. L., and Steitz, J. A. (1986). Pre-mRNA splicing in vitro requires intact U4/U6 small nuclear ribonucleoprotein. Ce// 46, 697.

Brawerman, G. (1976). Characteristics and significance of the polyadenylate sequence in mammalian messenger RNA. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 17, 117.

Buckingham, M. E., Caput, D., Cohen, A., Whalen, R. G., and Gros, F. (1974). The syn- thesis and stability of cytoplasmic messenger RNA during myoblast differentiation in culture. Proc. Natl. Acad. Sci. 71, 1466.

Chen, C. Y. A., and Shyu, A. B. (1994). Selective degradation of early-response-gene mRNAs: Functional analysis of sequence features of the AU-rich elements. Mol. Cell. Biol. 14, 8471.

Chen-Kiang, S., Nevins, J. R., and Darnell, J. E. (1979). N-6-methyl-adenosine in aden- ovirus type 2 nuclear RNA is conserved in the formation of messenger RNA. J. Mol. Biol. 135, 733.

Curtis, D., Lehmann, R., and Zamore, P. D. (1995). Translational regulation in develop- ment. Ce// 81, 171.

Decker, C. J., and Parker, R. (1993). A turnover pathway for both stable and unstable mRNAs in yeast: Evidence for a requirement for deadenylation. Genes Dev. 7, 1632. Decker, C. J., and Parker, R. (1994). Mechanisms of mRNA degradation in eukaryotes.

Trends Biochem. Sci. 19, 336.

Dever, T. E. (2002). Gene-specific regulation by general translation factors. Cell 108, 545.

Dreyfuss, G. (1986). Structure and function of nuclear and cytoplasmic ribonucleoprotein particles. Ann. Rev. Cell Biol. 2, 459.

Edmonds, M., Vaughn, M. H., Jr., and Nakazato, H. (1971). Polyadenylic acid sequences in the heterogeneous nuclear RNA and rapidly labeled poly-ribosomal RNA of HeLa cells: Possible evidence for a precursor relationship. Proc. Natl. Acad. Sci. 68, 1336.

Fitzgerald, M., and Shenk, T. (1981). The sequence 5’-AAUAAA-3’ forms part of the recognition site for polyadenylation of late sv40 mRNAs. Cell 24, 251.

Florkiewcz, R. Z., and Sommer, A. (1989). Human basic fibroblast growth factor gene encodes four polypeptides: Three initiate translation from non-AUG codons. Proc. . Natl. Acad. Sci. 86, 3978.

Fraser, N. W., Nevins, J. R., Ziff, E., and Darnell, J. E. (1979). The major late adenovirus type-2 transcription unit: Termination is downstream from the last poly(A) site. J Mol. Biol. 129, 643.

Furuichi, Y., LaFiandra, A., and Shatkin, A. J. (1977). 5’-terminal structure and mRNA stability. Nature 266, 235.

Furuichi, Y., and Shatkin, A. J. (1989). Characterization of cap structures. Methods Enzymol. 180, 164.

Gorlach, M., Burd, C. G., and Dreyfus, G. (1994). The mRNA poly(A)-binding protein: Localization, abundance, and RNA-binding specificity. Exp. Cell Res. 211, 400.

Hann, S. R., King, M. W,, Bentley, D. L., Anderson, W. C., and Eisenman, R. N. (1988).

- 23 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

A non-AUG translational initiation in c-myc exon | generates an N-terminally distinct protein whose synthesis is disrupted in Burkitt’s lymphomas. Ce// 52, 185.

Hashimoto, C., and Steitz, J. A. (1986). A small nuclear ribonucleoprotein associates with AAUAAA polyadenylation signal in vitro. Ce// 45, 581.

Howe, J. G., and Hershey, J. W. B. (1984). Translation initiation factor and ribosome asso- ciation with the cytoskeletal framework from HeLa cells. Ce 37, 85.

Huez, G., Marbaix, G., Hubert, E., Leclercq, M., Nudel, U., Soreq, H., Salomon, R.., Lebleu, R., Revel, M., and Littauer, U. Z. (1974). Role of the polyadenylate segment in the translation of globin messenger RNA in Xenopus oocytes. Proc. Natl. Acad. Sci. 71,

3143. Jackson, R. J., and Standart, N. (1990). Do the poly(A) tail and 3’ untranslated region con-

trol mRNA translation? Ce// 62, 15.

Jung, A., Sippel, A. E., Grez, M., and Schutz, G. (1980). Exons encode functional and structural units of chicken lysozyme. Proc. Natl. Acad. Sci. 77, 5759.

Knight, E., Anton, E. D., Fahey, D., Friedland, B. K., and Jonak, G. J. (1985). Interferon regulates c-myc expression in Daudi cells at the post-transcriptional level. Proc. Natl. Acad. Sci. 82, 1151.

Kozak, M. (1986). Point mutations define a sequence flanking the AUG initiator codon that modulates translation in eukaryotes. Cell 44, 283.

Kuge, H., and Richter, J. D. (1995). Cytoplasmic 3’ poly(A) addition induces 5’ cap ribose methylation: Implications for translational control of maternal mRNA. EMBO J. 14, 6301.

Leibold, E. A., and Munro, H. N. (1988). Cytoplasmic proteins binds in vitro to a highly conserved sequence in the 5’ untranslated region of ferritin heavy and light-subunit mRNAs. Proc. Natl. Acad. Sci. 85, 2171.

Lenk, R., Ransom, L., Kaufman, Y., and Penman, S. (1977). A cytoskeletal structure with associated polyribosomes obtained from HeLa cells. Cell 10, 67.

Lewin, B. (Ed.). (2004). “Genes VIII.” Pearson Education, Upper Saddle River, NJ.

Lim, L., and Cannelakis, E. S. (1970). Adenine-rich polymer associated with rabbit reticu- locyte messenger RNA. Nature 227, 710.

Manley, J. L., Yu, H., and Ryner, L. (1985). RNA sequence containing hexanucleotide AAUAAA directs efficient mRNA polyadenylation in vitro. Mol. Cell. Biol. 5, 373. Maquat, L. E. (1997). RNA Export from the Nucleus. /n “mRNA Metabolism and Post- Transcriptional Gene Regulation” (J. B. Harford and D. R. Morris, Eds.). Wiley-Liss,

New York, pp. 107-126.

Marbaix, G., Huez, G., Burny, A., Cleuter,Y., Hubert, E., Leclercq, M., Chantrenne, H.., Soreq, H., Nudel, U., and Littauer, Z. (1975). Absence of polyadenylate segment in glo- bin messenger RNA accelerates its degradation in Xenopus oocytes. Proc. Natl. Acad. Sci. 72, 3065S.

Nevins, J. R. (1983). The pathway of eukaryotic mRNA formation. Ann. Rev. Biochem. 52, 441.

Nevins, J. R., and Darnell, J. E. (1978). Steps in the processing of Ad2 mRNA: poly(A)* nuclear sequences are conserved and poly (A) addition precedes splicing. Cell 15, 1477.

O’Hara, E. B., Chekanova, J. A., Ingle, C. A., Kushner, Z. R., Peters, E., and Kushner, S. R. (1995). Polyadenylation helps regulate mRNA decay in E. coli. Proc. Natl. Acad. Sci. 92, 1807.

Pifiol-Roma, S., and Dreyfus, G. (1993). hnRNP proteins: Localization and transport between the nucleus and the cytoplasm. Trends Cell. Biol. 7, 151.

Preobrazhensky, A. A., and Spirin, A. S. (1978). Informosomes and their protein compo-

« 24

3 信使 RNA

nents: The present state of knowledge. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 21, 1.

Proudfoot, N. J., and Brownlee, G. G. (1976). 3’ Non-coding region sequences in eucary- otic messenger RNA. Nature 263, 211.

Reddy, R., Ro-Choi, T. S., Henning, D., and Busch, H. (1974). Primary sequence of U-1 nuclear ribonucleic acid of Novikoff hepatoma ascites cells. J. Biol. Chem. 2A9, 6486.

Sachs, A. B., and Kornberg, R. D. (1990). Purification and characterization of polyadeny- late-binding protein. Methods Enzymol. 181, 332.

Shatkin, A. J. (1976). Capping of eucaryotic mRNAs. Cell 9, 645.

Shatkin, A. J. (1985). mRNA cap binding proteins: Essential factors for initiating transla- tion. Cell 40, 223.

Shaw, G., and Kamen, R. (1986). A conserved AU sequence from 3’ untranslated region of GM-CSF mRNA mediates selective messenger RNA degradation. Ce/l 46, 659.

Shyu, A. B., Belasco, J. G., and Greenberg, M. E. (1991). Two distinct destabilizing ele- ments in the c-fos message trigger deadenylation as a first step in rapid mRNA decay. Genes Dev. 5, 221.

Spirin, A. S. (1994). Storage of messenger RNA in eukaryotes: Envelopment with protein, translational barrier at 5’ side, or conformational masking by 3’ side. Mol. Reprod. Dev. 38, 107.

Standart, N., and Jackson, R. J. (1994). Regulation of translation by specific protein/mRNA interations. Biochimie 76, 867.

Tosi, M., Young, R. A., Hagenbuchle, O., and Schibler, U. (1981). Multiple polyadenyla- tion sites in a mouse a-amylase gene. Nucleic Acids Res. 9, 2313.

Wilson, T., and Treisman, R. (1988). Removal of poly(A) and consequent degradation of c-fos mRNA facilitated by 3’ AU-rich sequences. Nature 336, 396.

Woolin, S.L., and P. Walter. (1988). Ribosome pausing and stacking during translation of a eukaryotic mRNA. EMBO J. 7, 3559.

Zeevi, M., Nevins, J. R., and Darnell, J. E., Jr. (1982). Newly formed mRNA lacking polyadenylic acid enters the cytoplasm and the polyribosomes but has a shorter half- life in the absence of polyadenylic acid. Mol. Cell Biol. 2, 517.

(2a; SHFR)

« 25

4.1 基本 原理

RNA 稳定 核糖 核酸 (RNase) 普遍 存在 使 RNA 核酸 细胞 RNase。 RNase 通过 方式 降解 RNA。 科研 ,RNase 活性 坏处 RNA (RT-PCR)、Northern 研究 RNase WAH. WRK RNA ,RNase

RNase 特别 复活 4 维持 结构 〈Blackburn Moore,1982)。 变性 (HAM) DHA. RNase 活性 迅速 恢复 (Sela ,1957) 。RNase 需要 辅助 因子 广泛 pH 范围 活性 明显 实验 开始 保证 实验 试剂 没有 RNase 污染 RNA 研究 消毒 试剂 试剂 没有 RNase 污染

研究 忽视 RNase 导致 样品 降解 重视 研究 进度 现在 商家 提供 材料 方便 RNA 试剂 传统 技术 控制 RNase 活性 花费 控制 RNase 活性 常常 研究 重要 问题 怀疑 纯化 RNA 试剂 具有 抑制 RNase 活性 试剂 除去 RNA 稳定 重要 例如 RNA 样品 核酸 敏感 RNA 样品 储存 缓冲 [如 TE (10mmol/L Tris,lmmol/L EDTA, pH7.5)] 严重 价值 样品 惨痛 教训 RNA 稳定 储存 纯化 RNA 方法 5 介绍

4.2 核糖 核酸 活性 消除

控制 核糖 核酸 (RNase) 活性 方式 细胞 裂解 方案 兼容 工作

细胞 细胞 ) 裂解 缓冲 温和 常常 RNase 抑制 直接

裂解 缓冲 考察 细胞 RNA 细胞 RNA, 评估 基因 调控

课题 RNase 活性 方法 利于 纯化 操作 维持 RNA

完整 操作 相当 费时 纯化 RNA 制品 抑制 RNase 26

4 核糖 核酸

活性 试剂 必须 容易 干扰 操作

实际 情况 迫使 方面 控制 RNase 活性

@ 控制 RNase 活性 试验 开始 实验 进行 鉴定 消除 RNase 污染 RNase 污染 限于 ) 药品 容器 微生物 真菌 污染 缓冲 唯一 污染 手指 油脂 含有 RNase。 RNase 污染 首要 措施 操作

@ 控制 RNase 性。 除了 偶然 实验 RNase 污染 深刻 认识 RNase RNA 降解 常情 RNase RNA 隔离 裂解 细胞 隔离 RNase 释放 RNase RNA, 抑制 RNase 活性 RNase 差异 具体 抑制 RNase 活性 措施 取决 细胞 RNase 活性 认识 文献

情况 首次 接触 细胞 保证 试验 方案 冲突 情况 努力 采取 严格 措施 控制 RNase 活性 RNA 样品 降解 危险 获得 RNA 样品 降解 使 RNA 实验 RNA 专用 试剂 试剂 RNA 实验

4.3 核糖 核酸 抑制

控制 核糖 核酸 〈RNase) 活性 : 特异 RNase 抑制 非特 异性 RNase 抑制 RNase 抑制 直接 细胞 缓冲 反应 缓冲 tii] RNase 活性 RNase 抑制 试剂 准备 使 RNase A、 RNA RNase 抑制 琼脂 电泳 观察 测试 RNA 降解 情况 RNase 抑制 特定 系统 8 8. 1) RNA 降解 修改 验方 满足 需要 公司 开发 RNase 抑制 直接 公司 购买 试剂

4.3.1 特异 RNase 抑制

4.3.1.1 核糖 复合

20 世纪 70 开发 核糖 复合 CVDR) 细胞 温和 裂解 使 RNase 抑制 。VDR 使 原因 : 开发 RNase 抑制 RNA A; 残留 VDR 抑制 mRNA 体外 翻译 (Berger Birkenmier, 1979; Berger ,1980); @VDR 副作用 抑制 活性 RT-PCR 相关 操作 禁止 使 VDR。 纯化 RNA 目的 使 VDR.

VDR 离子 核糖 形成 复合 离子 替代 磷酸 (Lein- hard ,1971; Berger Birkenmier,1979)。 作为 VDR tt, RNase 裂解 RNA 磷酸 产生 RNA 核糖 复合 形成 使 复合 结合 ,VDR 通过 RNase 锁定

“i

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

抑制 RNase 活性 。VDR 广 细胞 RNase 紧密 结合 包括 蔗糖 梯度 离心 (Benecke ,1978; Nevins Darnell,1978)。 之, VDR 通过 RNase AA] MAGA I til RNase 活性 RNA 《〈 细胞 RNA), Northern 核酸 保护 检测 评估 转录 RNA 情况 偶尔 使 VDR。 使 VDR 控制 RNase 活性 PCR 实验 选用 VDR 合适

通常 VDR 制备 200mmolL 溶液 验方 )。 RNase ,VDR 使 5 20mmolL。 浓度 抑制 细胞 RNase (Berger Birkenmier, 1979), VDR 抑制 RNase A NaseTi 特别 抑制 RNase H, VDR 抑制 poly(A) 聚合 活性 进行 实验 VDR 抑制 细胞 裂解 核酸 活性 含有 0.1% (1lg/L)8- 溶液 反复 除去 VDR。8- RNase 抑制 10mol 乙酸 CEDTA) 除去 VDR。 研究 1mol EDTA 足以 VDR 复合 使 VDR 使 含有 EDTA HRPM. 使 核酸 抑制 : 氯仿 裂解 使 含有 EDTA 缓冲

4.3.1.2 RNasin

VDR 优秀 替代 商品 RNase 抑制 RNasin (Promega, Madison, WDI) 核酸 抑制 抑制 核酸 活性 使 VDR 问题 胎盘 蛋白质。 克隆 基因 方法 保证 蛋白质 供应 。RNasin 相对 51000, 抑制 核酸 活性 依赖 (DTT)®, RNasin 竞争 方式 核酸 结合 抑制 RNase 活性 结合 常数 Ki = 4.4X10!4 (Blackburn ,1977; Blackburn,1979)。 广 提供 RNasin 制品 存在 DNA 污染 RNase 抑制 临床 诊断

常规 使 RNasin 浓度 250~1000U/ml, Em A ec He HH Hi] RNase A, RNase B RNase C 活性 抑制 RNase T,. Sl 核酸 曲霉 RNase (Promega f= fh in- sert) 非特 异性 RNase 抑制 SUPERase. In (Ambion, Austin TX), 广 RNase 活性

RNasin 控制 核酸 活性 主要 优点 它们 体外 反应 兼容 方面 VDR 。RNasin 保护 合成 CDNA mRNA 模板 (de Martynoff ,1980); 转录 ,RNasin 提高 RNA 产量 RNA 完整 (Scheider ,1988 ); RNasin 提高 体外 翻译 产量 活性 (Scheele Blackburn, 1979). (8 FAA RNasin 变性 浓度 尿素 65C, 导致 RNase-RNasin 复合 RNase 活性 恢复

4.3.2 非特 异性 RNase 抑制 广泛 报道 非特 异性 RNase 抑制 使 目的

@@ 抑制 DTT 浓度 浓度 DTT DTT 兼容

28 op

4 核糖 核酸

RNase 活性 RNA 使 程度 抑制 RNase 活性 没有 取得 完全 效果 RNase 活性 方法 目的 特异 抑制 包括 肝素 (Palmitor ,1970; Cox, 1979), MAAR. BA HRA AR (dextran), 阳离子 表面 活性 (Dahle Macfarlane, 1993). HEH (clays macaloid) (ben- tonite) Blumberg,1987) 生物 技术 药物 方面 追溯 20 世纪 30 (Saywell,1934) 几乎 达到 普及 程度 (Blade Boulton,1988)。 报道 抑制 RNase 活性 黏土 制备 方法 〈Fraenkel- Conrat ,1961; Poulson, 1973; Blumberg,1987), 现在 黏土 抑制 RNase 活性 例子

实验 容易 获得 氧化 (3%), 〈0. 5mol/L) 硫酸 〈SDS) (0.1%~0.5%) 混合 实验 自制 抑制 RNase 性, 直接 购买 制备 抑制 RNase 试剂 介绍 试剂 消除 RNase 广泛 RNA 制备

4.4 试剂 准备

配制 试剂 RNA 实验 尤其 RNA 手套 重要 油脂 实验 技术 油脂 RNase, RNase 污染 潜在 RNase 污染 进行 RNA 实验 犹豫 手套 离开 实验 脱手 实验 手套 研究 RNA 方法

关于 实验 塑料 制品 那些 独立 包装 进行 RNA 实验 需要 盖子 整齐 15ml 50ml 消毒 离心 使 培养 标准 塑料 RNase《〈 ), 使 进行 RNA 实验 必须 操作 袋子 取出 使 包装 丙烯 塑料 制品 潜在 RNase 污染 离心 丙烯 微量 污染 污染 储备 因此 RNA 样本 直接 间接 接触 任何 塑料 制品 消毒 消毒 手套 包装 微量 离心 500ml 玻璃 烧杯 包装 消毒 手套 消毒 微量 离心 RNA 实验 专用

使 玻璃 进行 溶剂 缓冲 操作 使 苯酚 氯仿 溶剂 混合 独立 包装 玻璃 使 玻璃 保存 RNA 实验 专用 实验 使 相反 温度 压力 消除 RNase 活性。 烘箱 消除 玻璃 RNase。 清洗 没有 RNase 污染 《〈 讨论 ) 200C 3 4h。 方法 除去 玻璃 RNase 活性 非常 实验 烘箱 材料 制品 需要 消毒 检查 厂家 提供 书面 资料 电话 询问 确定 材料

29

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

储备 实验 溶液 制备 预计 使 甚至 实验 导致 结果 原因 微生物 产生 RNase 瓶子 溶液

4.4.1

当心 ”二 (DEPC) 致癌 非常 仔细 厂家 安全 预防 措施

保证 彻底 消除 溶液 塑料 制品 污染 RNase 活性 缓冲 RNase 活性 残余 注意 数据 代表 重复 产生 严重 问题 避免 现象 作者 购买 厂家 制备 RNase 活性 溶液 值得 投资 储备 缓冲 直接 间接 RNase 抑制 (an DEPC)

DEPC 非特 异性 RNase 抑制 9。 消除 试剂 RNase 活性 使 容易 RNase 活性 介绍 ), 历史 RNA 工作 DEPC db BARRE EL, BRA RNase 活性 制备 溶液 缓冲 ,DEPC 浓度 0.05% 积分 )@8。 缓冲 Lab- Line ) 磁力 搅拌 剧烈 搅拌 20 30min。 溶液 剩余 DEPC。 除去 DEPC 方法 消毒 温度 压力 ,DEPC 完全 降解 氧化 乙醇 氧化 乙醇 挥发 溶液 60C 8@8, 通风 溶液 60C 保温 破坏 DEPC。 DEPC 通风 煮沸 1h 除去 DEPC。 DEPC 致癌 操作 仔细 ,DEPC 剩余 DEPC 彻底 除去 ), HA DEPC Xt fig ES KT PRE A TR. OB EE ee AY DEPC, 修饰 (Henderson , 1973), Mine a RNA 物理 体外 翻译 (Ehrenberg 1974) 印迹 PCR 实验 观察 ) DEPC 直接 细胞 悬浮 裂解 纯化 RNA 原因

污染 RNase 磁力 搅拌 溶液 彻底 除去 DEPC。 常情 ,高

足够 溶液 残余 DEPC 特有 味道 实验 除去 溶液 DEPC 溶液 消毒 维持 30min 左右

重要 提示

D DEPC 含有 氨基 溶液 DEPC (Berger, 1975) DEPC 常用 缓冲 Tris (三 ) 缓冲 DEPC 除去 DEPC, 制备 含有 Tris 溶液 消毒

Q 缓冲 DEPC 兼容 试剂 DEPC RNase,

@ 修饰 抑制 蛋白 活性 DEPC 破坏 质粒 蛋白 糟糕 技术 使 @ 早先 报告 提议 使 0.1% DEPC, 使 0.05%DEPC 消除 RNase 污染 效果 使 0.1% DEPC DEPC 需要 使 DEPC 浓度 0.05%% @ 重要 事项 : SDS、NP-40 NaOH 溶液 热处理 制作 RNase 污染 溶液 - 30 -

4 核糖 核酸

除去 RNase 蛋白

@ 电泳 DEPC 除去 DEPC 浸泡 冲洗 电泳 DEPC 溶液 接触 丙烯 塑料 DEPC 敏感 消毒 方法 “4. 4. 3 氧化 ”。

许多 RNase, 容易 复活 RNase, RNase 抑制 除去 RNase 制剂 核酸 活性 恢复 RNA 专用 储备 谨慎 方法 试剂 适当 体积 储备 反复 取出 溶液 使 操作 排除 偶然 RNase 污染 利于 回收 RNA。 固体 药品 没有 RNase WAR.

4.4.2 替代 方法 消毒 冲洗

原因 阻止 实验 使 DEPC。 原因

DEPC 适合 那些 操作 规范 实验 操作 健康

@ DEPC 试剂 除去 DEPC PCR 反应 。DEPC 使 导致 PCR 反应 反应 失败 获得 良好 结果 实验 研究 使 浓度 0. 5% ~5 % HY DEPC。

@ Ase FMA RNase 活性 情况 普遍 走运

合适 替代 方式 靠得住 厂家 购买 RNase DEPC 制造 RNase 污染 那些 医院 附属 实验 ”中 没有 污染 RNA 工作 RNA 80"C RNase 储备 通常 使 比较 使 方便 DEPC

4.4.3 氧化

ZAR, LMR SAA, MER HT. mR. HK AS. is BPR RNase。 物品 3% Wat Ak AAP 2 th BE AE #8 A HRA RNase 活性 BFE Wi BE SK EN), PARE AE EE. AK SE A A A. BEI 20 ~ 30min Be ar ML 4e Ta AY RNase 活性 冲洗 使 标准 试剂 公司 通常 提供 浓度 双氧水 30%%)。 浓度 危险 丙烯 设施 修复 损伤 损伤 研究 避免 使 陈旧 氧化 溶液 双氧水 溶液

4.4.4 硫酸

除去 实验 表面 RNase 活性 方法 - 硫酸 (SDS) 溶液 溶液 溶液 含有 0. Smol/L NaOH 0.5 SDS。 使 溶液 当心 氧化 - 深度 清洗 除去 清洗 干净 实验 研究 健康 NaOH RNA 样品 使 除去 残余 NaOH, 方案 没有 使 双氧水 溶液 预先 混合 - 硫酸

- 31

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

4.5 JWG BEE DEK)

常用 降低 消除 核糖 核酸 活性 试剂 试剂 常常 RNA 缓冲 使 单独 使 那些 核糖 核酸 细胞 那些 核酸 含量 细胞 广 接受 获得 结果 方案 裂解 缓冲 盐酸 介绍 优秀 变性 方法 它们 具有 缓冲 相当 破坏 培养 细胞 5 Dt BBS» FL ee Aa W]e To FRR EAH, A Fd KAA fe RNA 混在 原先 介绍 变性 裂解 缓冲 使 必须 添加 核糖 核酸 抑制 生物 技术 公司 提供 试剂 专门 除去 实验 表面 核糖 核酸

4.5.1 盐酸

盐酸 (G+ HC) 离子 蛋白 质变 工作 浓度 4~6mol/L KER 充分 抑制 细胞 整个 核糖 核酸 活性 生物 破坏 ME, BRGERERUMRABRM (CTC) 缓冲 缓冲

4.5.2

TAMA (GTC) 变性 蛋白 盐酸 核酸 RNA (Chirgwin ,1979) 选用 GTC. LE Wi # & 4mol/L fy GTC 溶液 8 乙醇 PME) 离子 ) 使

4.5.3 硫酸

硫酸 (SDS) 离子 迅速 破坏 生物 SDS 迅速 破坏 结构 RNase 脱氧 核糖 核酸 (DNase) 活性 SDS 纯化 核酸 试剂 关键 SDS 制备 10% (100g/L) 20%(200g/L) 储备 : SDS 工作 浓度 0.1% ~0.5%. SDS 纯度 显著 影响 变性 功能 存在 ,SDS 容易 沉淀 SDS 溶解 缓冲 SDS.

4.5.4 N-

N- 〈sarkosyl sarcosyl) SDS 离子 SDS ,N- 溶液 溶解 含有 裂解 缓冲 首选 。N- 缓冲 常用 。N- 破坏 细胞 结构 核酸 活性 细胞 裂解 蛋白质 核酸

4.5.5 苯酚 : Ah:

当心 仿 混合 致癌 腐蚀 试剂 特别 采取 生产 厂家 提出 安全 措施 5

4 PRES

溶剂 苯酚 氯仿 非常 变性 溶剂 导致 蛋白 稳定 杂质 )8 蛋白 质变 苯酚 稳定 迅速 氧化 使 苯酚 溶液 粉红 产生 自由 断裂 磷酸 核酸 降低 氧化 速度 8- 0.1% (lg/L)。 常用 含水 缓冲 饱和 体积 氯仿 混合 苯酚 试剂 仿 稳定 苯酚 密度 蛋白 除去 效率 利于 除去 物质 苯酚 : 氯仿 混合 poly(A)* mRNA 产量 苯酚 获得 (Perry ,1972) 苯酚 : 氯仿 混合 氯仿 减少 溶剂 产生 蛋白 泡沫 常用 试剂 比例 25 : 24:1 (体积 ) HEM: A: RO. ee 溶剂 存在 ,RNase 活性 抑制

附录 3 详细 介绍 苯酚 制备

4.5.6 8-HEEM

8- FE AEE OR FE YB AK BR SY) BB oP SB A. BS A A OS BSA ER (Kirby, 1956). 8 REM (EAS AA EB Be AM. SILA 氧化 产物 ) MM. S-FESLME MA YR EU HE 0.1% g/L). SREERKHMAEEM : 氯仿 黄色 研究 核酸 纯化

8- 金属 除去 细胞 裂解 核糖 复合 非常 VDR 结合 ,8- 颜色 黄色 转化 绿 苯酚 仍然 VDR 除去 使 使 VDR 缓冲 8 RHE 重金 RNA 接触 导致 RNA 降解 RNA 试剂 必须 纯度 生化 溶解 制备

4.5.7 AU

Th EA 10 FB VE tn HE BY UE BG BE SP A KRY OT Sl. FA CsCl 抑制 核糖 核酸 使 核酸 CsCl1。 杂质 固体 CsCl 200°C HEHE 6 8h 除去 CsCl 残余 RNase 活性 使 树脂 /或 硅胶 纯化 需要 使 密度 梯度 离心 CsCl 作为 核酸 纯化 介质 重要 降低

4.5.8

〈CsTFA) 溶性 存在 情况 乙酸 溶解 核酸 结合 蛋白质。 因此 CsTFA (Amersham Biosciences 公司 产品 ) 核糖 优秀 抑制 使 研究 必用 传统 方法 苯酚 : 氯仿 蛋白酶 K) 白质 CsCl ,CsTFA 特性 RNase 活性

@ 购买 苯酚 需要 实验 纯化 苯酚 25 实验 广泛 使 自己 纯化 苯酚 苯酚 危险 直接 纯化 苯酚 试剂 实验 苯酚 危险 尽量 避免 非得 自己 实验 参照 苯酚 实验 方法 (Wallace,1987), 苯酚 蒸馏。

e 33 e

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

(Carter ,1983), 乙醇 溶解 乙醇 溶解 RNA 离心 沉淀 CSTFA。 CsTFA 密度 2.6g/ml, CsTFA 离心 RNA 离心 沉淀 BA. Wl) CsC1, 方案 主要 缺点 使 离心 目前 实验 使

4.5.9 蛋白酶

AAR K AAR ARR (22 AIRE). RVR TB Tritirachium album. FEY WRAP. HARB K 4 pH 4.0~12.5 稳定 pH £ 8.0, 4 25~65° CMA MBIA (Ebeling ,1974) Ca 结合 缺乏 Ca 降解 核酸 蛋白质。 偶尔 EDTA FER. SAB K F 50C 抑制 稳定 Mg RNase 活性

通常 蛋白酶 溶解 20mg/ml 储备 储备 20C 稳定 保存 1 蛋白酶 50mmol/L Tris(pH 8.0), lmmol/L CaCl, 4C 稳定 保存 缓冲 系统 10mmol/L Tris-HCl(pH 8.0)、lmmol/L EDTA, 0.5% SDS, BAM K 工作 溶液 浓度 50kxg/ml。 缓冲 lmmol/L Ca2+ 蛋白 K 活性

蛋白酶 (pronase) (Streptomyces griseus) HRA. FERRE K。 需要 蛋白 系统 消除 污染 核糖 核酸 脱氧 核糖 核酸 活性 使 系统 需要 简单 蛋白 储备 L20mg/ml, 10mmol/L Tris-HCI(pH 7.5), 10mmol/L NaCl] 37°C 保温 1h, 蛋白 系统 直接 厂家 购买 预先 降解 蛋白 使 需要 额外 自制 蛋白 储备 溶液 溶液 保存 20 冰箱 反应 蛋白酶 K 相同 工作 浓度 推荐 1mg/ml FA.

4.5.10 RNAlater (RNA 保护 )

RNA 研究 知道 RNAlater 专利 保护 溶液 保护 细胞 RNA, 因素 RNase 导致 RNA 裂解 利于 研究 材料 回收 质量 RNA。RNAlater 特征 样品 室外 收集 样品 回收 RNAlater 植物 细胞 细胞

4.6 实验 : ZAGREBESHOSR

介绍 核糖 复合 合成 方案 Leinhard 〈1971)、Berger Birkenmier (1979) 合成 方案 进行 修改 实验 合成 VDR 试剂 4. 1) 放置 温度 pH NaOH。 比例 放大 方案 制备 VDR

@ 尿 固体 0.5mmol, 8ml

@ 通风 核糖 混合 固体 熟练 使 适当 操作 操作 粗心 引起 严重

34

4 核糖 核酸

伤害

@ 通信 氮气 情况 溶液 气泡 lml 2mol/L VOSO, GRA).

4 AMANDLA.

@ 10mol/L NaOH, 使 溶液 pH 维持 6.0 左右

© 然后 lmol/L NaOH, 使 溶液 pH 7. 0。 3

注意 “在 pH 6.0 7.0 使 mol/L 4.1 Corning HAA] (Corning,

NaOH。 pH 变化 速度 New York) @ pH7.0 离子 CN) tie. HM 易于 添加 反应 pH 沉淀 形成 绿色 转化 特征 绿色 电极 温度 通信 氮气 ER 氢气 缺乏 、pH 3. 5 情况 ,4 离子 氧化 5 离子 抑制 核酸

@ 调整 10ml。

”经 简单 离心 除去 合成 VDR 溶液 NazSO4 使 离心 除去 VDR 溶液 Naz SO;

@ 合成 反应 产物 200mmol/L 核糖 复合 储备 No 情况 20 储存 1 2 70 储存 1

4.7 &#

Benecke, B. J., Ben-Ze’ev, A., and Penman, S. (1978). The control of mRNA production, translation, and turnover in suspended and reattached ee ee fibro- blasts. Ce 14, 931.

Berger, S. L. (1975). Diethyl pyrocarbonate: An examination of its properties in buffered solutions with a new assay technique. Anal. Biochem. 67, 428.

Berger, S. L., and Birkenmier, C. S. (1979). Inhibition of intractable nucleases with ribonu- cleoside-vanadyl complexes: Isolation of messenger ribonucleic acid from resting lym- phocytes. Biochemistry 18, 5143.

Berger, S. L., Hitchcock, M., Zoon, K. C., Birkenmier, C. S., Friedman, R. M., and Chang, E. H. (1980). Characterization of interferon messenger RNA synthesis in Namalva cells. J. Biol. Chem. 255, 2955.

Blackburn, P. (1979). Ribonuclease inhibitor from human placenta: Rapid purification assay. J. Biol. Chem. 254, 12484.

Blackburn, P., and Moore, S. (1982). Pancreatic ribonuclease. In “The Enzymes” (P. D. Boyer, Ed.), 3rd ed., pp. 317-433. Academic Press, New York.

Blackburn, P., Wilson, G., and Moore, S. (1977). Ribonuclease inhibitor from placenta. J. Biol. Chem. 252, 5904.

Blade, W. H., and Boulton, R. (1988). Absorption of protein by bentonite in a model wine solution. Am. J. Vitic. 39(3), 193.

Blumberg, D. D. (1987). Creating a ribonuclease-free environment. Methods Enzymol. 152, 20.

- 35 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Carter, C., Britton, V G., and Haff, L. (1983). CsTFA: A centrifugation medium for nucleic acid isolation. BioTechniques 1, 142.

Chirgwin, J. M., Przybyla, A. E., MacDonald, R. J., and Rutter, W. J. (1979). Isolation of biologically active ribonucleic acid from sources enriched in ribonuclease. Biochemistry 18, 5294.

Cox, R. (1979). Quantitation of elongating form A and B RNA polymerases on chick oviduct nuclei and effects of estradiol. Cell 7, 455.

Dahle, C. E., and Macfarlane, D. E. (1993). Isolation of RNA from cells in culture using Catrimox-14 cationic surfactant. BioTechniques 15, 1102-1105.

de Martynoff, G., Pays, E., and Vassart, G. (1980). Synthesis of a full length DNA com- plementary to thyroglobulin 33S mRNA. Biochem. Biophys. Res. Comm. 93, 645.

Ebeling, W., Hennrich, N., Klockow, M., Metz, H., Orth, H. D., and Lang, H. (1974). Proteinase K from Tritirachium album limber. Eur. J. Biochem. 47, 91.

Ehrenberg, L., Fedorcsak, I., and Solymosy, F. (1974). Diethyl pyrocarbonate in nucleic acid research. Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 16, 189.

Fraenkel-Conrat, H., Singer, B., and Tsugita, A. (1961). Purification of viral RNA by means of bentonite. Virology 14, 54.

Henderson, R. E. L., Kirkegaard, L. H., and Leonard, N. J. (1973). Reaction of diethyl pyrocarbonate with nucleic acid components. Adenosine-containing nucleotides and dinucleoside phosphates. Biochim. Biophys. Acta 294, 356.

Kirby, K. S. (1956). A new method for isolation of ribonucleic acids from mammalian tis- sue. Biochem. J. 64, 405.

Leinhard, G. E., Secemski, I. I., Koehler, K. A., and Lindquist, R. N. (1971). Enzymatic catalysis and the transition state theory of reaction rates: Transition state analogs. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 36, 45.

Nevins, J. R., and Darnell, J. E. (1978). Steps in the processing of Ad2 mRNA: poly(A‘) nuclear sequences are conserved and poly(A*) addition precedes splicing. Cell 15, 1477.

Palmiter, R., Christensen, A., and Schimke, R. (1970). Organization of polysomes from pre-existing ribosomes in chick oviduct by a secondary administration of either estra- diol or progesterone. J. Biol. Chem. 245, 833.

Perry, R. P., La Torre, J., Kelley, D. E, and Greenberg, J. R. (1972). On the lability of poly(A) sequence during extraction of messenger RNA from polyribosomes. Biochim. Biophys. Acta 262, 220.

Poulson, R. (1973). Isolation, purification, and fractionation of RNA. Jn “The Ribonucleic Acids” (P. R. Stewart and D. S. Letham, Eds.), pp. 243-261. Springer- Verlag. New York.

Saywell, L. G. (1934). Clarification of wine. Ind. Eng. Chem. 26, 981.

Scheele, G., and Blackburn, P (1979). Role of mammalian RNase inhibitor in cell-free pro- tein synthesis. Proc. Natl. Acad. Sci. 76, 4898.

Scheider, R., Schneider-Scherzer, E., Thurnher, M., Auer, B., and Schweiger, M. (1988). The primary structure of human ribonuclease/angiogenin inhibitor (RAI) discloses a novel, highly diversified protein superfamily with a common repetitive module. EMBO IO

Sela, M., Anfinsen, C. B., and Harrington, W. F. (1957). The correlation of ribonuclease activity with specific aspects of tertiary structure. Biochim. Biophys. Acta 26, 502.

Wallace, D. M. (1987). Large- and small scale phenol extractions. Methods Enzymol. 152, 33.

(刘建华 ;, )

36 -

5.1 #A RE

根据 建立 RNA 方法 RNA 进行 优化 RNA 方法 获得 细胞 RNA、 RNA 细胞 细胞 RNA。 细胞 细胞 RNA 细胞 RNA. 细胞 裂解 RNA 操作 裂解 细胞 缓冲 细胞 缓冲 含有 苛刻 试剂 硫酸 (SDS). N-+ be 3k ALAR 〈sarcosyD) 尿 仿 试剂 破坏 细胞 使 核酸 细胞 裂解 缓冲 温和 溶解 细胞 保持 细胞 完整 Nonidet P-40® (NP-40) 裂解 缓冲 8。 离心 裂解 混合 除去 完整 细胞 细胞 残渣 方案 取决 裂解 缓冲 添加 RNase 抑制 RNA 操作 仔细 程度 注意 建立 RNA 基本 技术 修改 技术 RNA, 直接 细胞 裂解 polyC(A)+ RNA,

细胞 裂解 细胞 RNA 细胞 RNA 属于 RNA。 代表 细胞 RNA 积累 RNA 代表 特异 基因 表达 调节 MK RNA RNA 转录 合成 速度 RNA 半衰期 稳定 RNA 进行 研究 主要 缺点 明显 变化 生化 仅仅 表现 转录 速率 改变 表现 RNA 工效 细胞 效率 RNA 稳定 使 RNA 翻译 效率 提出 转录 产物 研究 需要 细胞 那些 细胞 裂解 开始 RNA 细胞 核能 继续 支持 RNA 延伸 标记 合成 RNA 技术 统称 实验 (nuclear runoff assay) (Marzluff Huang, 1984), 利于 保持 细胞 结构 标记 转录 RNA 17 逃逸 实验 )。

@ Nonidet P-40 称呼 没有 厂家 提供 。Igepel CA-630 (Sigma Cat. [3021) NP-40 替代 NP-40。

@ 尽管 渗透 裂解 温和 裂解 细胞 方式 细胞 植物 细胞 细胞 适当 方法 破碎 细胞 渗透 方法 裂解 细胞

37

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

5.2 RNA 目的

RNA 设计 确定 因素 细胞 裂解 方法 取决 研究 确定 RNA 含量 RNA 重要 确定 抑制 核糖 核酸 活性 方法 研究 基因 表达 调节 转录 进行 转录 进行 细胞 破碎 RNA 方法 必须 独立 RNA 细胞 RNA 使 RNA 制剂 数据 价值 ,RNA 纯化 必须 满足 研究 特殊 目标

讨论 RNA 目的 研究 RNA 进行 5. 1 微量 进行 RNA 清楚 方法 针对 RNA

#5.1 RNA

mRNA 细胞 RNA 细胞 RNA 细胞 RNA 除了 线粒体 RNA 细胞 RNA 细胞 poly(A) * RNA 细胞 细胞 RNA 细胞 poly(A)+RNA 细胞 RNA poly(A)~ RNA RNA( rRNA fl tRNA) mtRNA 线粒体 RNA

叶绿体 RNA( 植物 ) 完整 细胞 获得 转录 产物 (含有 ) 运输 细胞 poly(A) * Al poly(A) RNA

cpRNA BK RNA mRNA

目标 1: weft Aid HY AWARE AA. ANAS A TK Re TOF i Wa Fe 裂解 培养 细胞 裂解 缓冲 完全 适宜 整个 样品 裂解。 同样 重要 溶解 方法 决定 增加 操作 制备 RNA 样品 DNA, 独立 纯化 细胞 RNA 细胞 RNA。 容易 RNA 样品 除去 DNA, 细胞 RNA 同时 纯化 RNA 哪些 细胞 - 细胞 方法 必须 RNA 纯化 兼容 设计 RNA 纯化 方案 考虑 纯化 RNA 操作 纯化 RNA 解决 研究 问题

目标 2: 保证 抑制 核糖 核酸 4 讨论 , A RNA 必须 抑制 RNase 活性 抑制 RNase GF it Al PAY RNase, gt ILA) RNase 细胞 裂解 RNase 活性 裂解 试剂 自身 抑制 RNase 活性 细胞 裂解 试剂 需要 添加 额外 RNase 抑制 保护 RNA 必须 抑制 消除 RNase 活性 操作 裂解 缓冲 兼容

目标 3: 选择 方法 样品 蛋白 DNA RNA 除去 细胞 裂解 蛋白 忠实 杂交 核酸 准确 定量 需要 仔细 除去 核酸 样品 蛋白 蛋白 蛋白 抑制 DNA MIRED. mA “AE” RNA 强烈 抑制 (第 18 ) AR AMBER (PCR) (第 19 )。 除去 蛋白

38 -

5 RNA 策略

® 蛋白酶 K

@ 溶剂 混合 苯酚 氯仿 反复

@) EA BMA Be oh YR EA A

© 蛋白

© 方法 任意 蛋白

任何 除去 蛋白 方法 控制 RNase 活性 蛋白 质变 样品 除去 ,RNA 样品 RNase 降解 非常 敏感 RNA 简单 变性 缓冲 核酸 敏感

目标 4: 选择 核酸 浓缩 方法 RNA 纯化 核酸 浓缩 通用 核酸 浓缩 方法 乙醇 核酸 进行 沉淀 5.2)。 0.1 FAR 3mol/L 乙酸 (pH 5.2) 核酸 样品 2.5 体积 95%% 100%% 乙醇 相互 作用 核酸 乙醇 溶解 使 核酸 溶液 沉淀 乙醇 沉淀 速率 依赖 温度 基因 DNA 快速 沉淀 ,RNA it 需要 20 放置 保障 核酸 充分 回收 NP- 40 方法 现象 基因 沉淀 ; RNA 沉淀 浓缩 核酸 样品 方法 8, 商家 提供 浓缩 装置 真空 浓缩 使 频率 方法 功率 取决 研究 使 乙醇 沉淀 核酸 使 广泛 硅胶 纯化 核酸 技术 乙醇 RNA CAR 马上 使

5$.2 核酸 沉淀

沉淀 LYE FAR KE NaAc 3mol/L,pH 5. 2 0. 1 体积 300mmol/L NaCl 2mol/L 0. 1 体积 200mmol/L Licl® 8mol/L 0.1 体积 800mmol/L NH, Ac® 10mol/L 0. 2 体积 2mol/L KAc 2. 5mol/L 0.1 体积 250mmol/L Glycogen® 10mg/ml 0. 01 100pg/ml Z (95% ~100%) 2. 2 2.5 体积 (100%%) 0.6~1. 0 体积

© wie Af: DNA 50ng/ml; RNA 100ng/ml。 浓度 沉淀 效果

@ 氧化 核酸 NaCl,LiCl 乙醇 溶解 RNA 进行 LiCl, 否则 沉淀 除去 LiCl。

@ 选用 NH4Ac cDNA。 溶液 失信 沉淀 简单 沉淀 除去 游离

使 Glycogen 谨慎 Glycogen 抑制 体外 反应

目标 5: 选择 合适 储存 纯化 RNA。 RNA 稳定 方式

正确 使 纯化 RNA 样品 迅速 降解 提出 方案 储存 RNA AI DNA, 2 fh 温度 储存 形式 5. 10 RNA 样品 储存 进行 讨论

© 浓缩 核酸 方法 反复 推荐 使 方法 核酸 样品 彻底 除去 残余 。39

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

5.3 裂解

自己 RNA 方法 商家 提供 RNA 产品 产品 RNA 方法 进行 修改 破损 程度 核糖 核酸 抑制 情况 方案 温和 裂解 缓冲 剧烈 裂解 缓冲 方案 获得 RNA 基因 表达 研究 章节 讨论 重要 事情 没有 “正确 ”方法 适宜 细胞 RNA, ”错误 方式 操作 引入 核糖 核酸 活性

5.3.1 温和 裂解 缓冲

离子 细胞 裂解 损伤 细胞 裂解 缓冲 含有 NP-40 (Favaloro ,1980) MgCl* 利于 细胞 溶解 保持 细胞 完整 因此 含有 NP-40 裂解 细胞 裂解, 细胞 RNA 细胞 RNA 混合 方案 离心 容易 除去 完整 细胞 细胞 细胞 获得 细胞 RNA 蛋白 白质 溶剂 混合 / 仿 系列 除去 策略 明显 优点 沉淀 回收 RNA 仅仅 代表 细胞 RNA, 研究 平方 特别 意义

方法 RNA 缺点 裂解 缓冲 完全 抑制 破坏 RNase 活性 细胞 裂解 隔离 RNase 活性 突然 释放 使 努力 RNA, 核酸 活性 损伤 RNA 完整 使 裂解 缓冲 必须 RNase 抑制 控制 核糖 核酸 活性 策略 RNA 方法 特别 标明 操作 进行 非常 用。 预先 冷却 使 试剂 试管 利用 裂解 特性 ) RNA, 值得 尝试 策略 含有 NP-40 缓冲 细胞 完整 细胞 缓冲 裂解 细胞 这样 回收 细胞 RNA 方法 回收 细胞 RNA 细胞 RNA, 方法

尤其 适合 细胞 RNA 介绍 回收 RNA 方案 17 详细 .

介绍 细胞 RNA

5.3.1.1 实验 方案 : 含有 NP-40 裂解 缓冲 RNA

方法 基础 利用 溶解 细胞 保持 细胞 完整 @。 细胞 RNA, 回收 完整 细胞 纯化 细胞 RNA (在 17 详细 介绍 ) 记录 使 方法 使 核糖 核酸 抑制 情况 非常 质量 RNA。 裂解 进行 ,速度 介绍 作者 使 改进 方法 CA 5. 1) 使 RNase 抑制 ,RNase 制剂 苯酚 /氯仿 混合 除去 溶液 蛋白 广泛 使 制备 技术 乙醇 沉淀 回收 RNA, SPRAIN SMART RNA 方法 方法 需要 离心 方法 - ) 方法 操作 温和 避免 细胞 温和 操作

© 细胞 细胞 RNase 抑制 敏感 根据 优化 裂解 。40

#58 RNA 策略

ED kz 离心 收集 培养 细胞

细胞 沉淀 | 裂解 缓冲

沉淀 蛋白 溶剂 乙醇 收集 沉淀 RNA 离心 沉淀 RNA (C20C )

5.1 含有 NP-40 裂解 制备 细胞 RNA。 方法 适合 培养 细胞 样本 预先 温和 方法 制备 细胞 RNA

程度 增加 RNase 降解 RNA 危险 管用 缓冲 裂解 获得 RNA, 介绍 方法 RNA 满足 RNA 试验 方法 培养 细胞 裂解 效果 细胞 裂解 效果 样本 Dounce 温和 避免 细胞 严重 损伤 ), 方法 产生 效果

Cl) 预先 : 制备 缓冲

苯酚 氧化 严重 影响 制备 RNA 质量 RNA 制备 5. 2)

60C ), 体积 Tris-<SDS RRA (A BS. 2A« des

100mmol/L NaCl

lmmol/L EDTA

10mmol/L Tris, pH 8.5

B. 5% SDS®

G@ Ah: (24:1) (图 5. 2B. ) 体积 Tris-SDS 饱和 混合 溶液 缓冲 5. 2C. )

@ SDS 保证 溶剂 质量 回收 poly(A)+RNA。 SDS 存在 依赖 pH, 苯酚 Tris-SDS 饱和 SDS A, Tris 缓冲 (100mmol/L NaCl,1lmmol/L EDTA, 10mmol/L Tris, pH 8.5) 必须

41 °

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

ASL EN BAERS B. 24 体积 氯仿 1 Tris-SDS 体积 体积

混合 “饱和 苯酚 “FG : C24:1)”

C. 体积 饱和 苯酚 (A) 仿 : “PCI25:24:1”

DAR: Ai: F KBE AWC) PMA 8-2 0.1%(1g/D)

E. 使 溶剂 试剂 4 保存 2 5.2 NP-40 细胞 RNA 试剂 制备 方法 Tris-SDS 缓冲 仅仅 Tris 饱和 。8- 使 试剂 除去 蛋白 实验 方案 标明 使 苯酚 : 氯仿 : HR. SMR PAY 使 制备 含有 8- 苯酚 : 氯仿 : eC

@ 缓冲 8 EM BARE 0.1%. iL MAH.

例如 ,20ml 熔化 20ml Tris-SDS 缓冲 混合 40ml Tris-SDS 饱和 苯酚 40ml (FAKED A: FRM (24:1) 混合 形成 溶液 缓冲 0.08g 8-FESEMEMK 浓度 0.1% 1g/L) 增强 缓冲 稳定 溶液 100ml 玻璃 试剂 4C 保存 6 8 使 瓶子 开关 冰箱 储存

当心 ”所 溶剂 操作 必须 通风 进行 眼睛 皮肤 进行 适当 防护 须根 废物

(2) RNA

© RFE!

@ 培养 细胞 离心 收集 预先 冷却 45 合适 离心

注意 ”附录 10 介绍 方案

@ 冰冷 裂解 缓冲 温和 充分 悬浮 沉淀 细胞 :

140mmol/L NaCl

1. 5mmol/L MgCl,

10mmol/L Tris-Cl, pH 8.5

0.5% NP-40®

10mmol/L AA KRKH RAW (VDR)@

10° 细胞 100ml 裂解 缓冲 保温 5min, 倒置 试管 细胞 裂解

注意 VDR 迅速 氧化 缓冲 使 VDR 裂解 缓冲 VDR 制备

© NP-40 @ 参阅 4 核糖 复合 缺点 e 42

#58 RNA 策略

储备 浓度 200mmol/L, 使 工作 浓度 5 20mmol/ Promega 公司 RNasin 裂解 缓冲 ( 250~1000U/ml) 抑制 RNase 特别 指明 RNA 试管 必须 放置

注意 2 取出 lul 裂解 显微镜 检测 细胞 裂解 程度 完整 细胞 Fil iF FS HH HK

4C 离心 5min, 细胞核 细胞 离心 5000Xg Bb, MAK 离心 合适 离心 离心

注意 1 尽管 500Xg 离心 沉淀 细胞 增加 离心 完全 除去 细胞 细胞 离心 除去 基因 DNA 细胞 hnRNA, 细胞 RNA

注意 2 如果 细胞 hnRNA 基因 DNA, 500Xg 离心 收集 细胞 需要 延长 离心 17 进行 详细 介绍

© ) 转移 RNase 试管 EDTA 10mmol/L,

注意 ”通常 Naz-EDTA 制备 500mmolL 储备 。EDTA 防止 Mg2+ Sr FO BIDE 核酸 蛋白 聚合

© 体积 黄色 液体 ) 心地 倒置 混合 15s 55°C Rit 5min。

注意 微量 离心 拇指 食指 倒置 使 混合 蛋白 充分 变性

注意 2 加热 利于 彻底 除去 样品 蛋白 热处理 样品 增加 溶剂 推荐 方案 减少 废物 体积

注意 3 VDR 接触 SRRERERRR BE. KEM FSRREMRA THESES FA. RZ 8- VDR 没有 颜色 变化

© 样品 放置 5min。

注意 : ”快速 冷却 利于 RNA

@) 台式 离心 500Xg 2000Xg 速度 离心

注意 ”离心 取决 试管 体积 需要 5min。 情况 使 冷冻 离心 冷冻 必需

© 仔细 RNase 离心 特别 干扰 蛋白质 升水 界面 蛋白 转移 离心 5. 1)

@ 体积 使 彻底 混合 4C, 500Xg 2000Xg 台式 离心 离心 速度 离心 需要 冷却

@ 仔细 取出 RNase 离心 明显 蛋白 直到 蛋白质 消失

注意 ”如 细胞 相对 体积 缓冲 需要 增加 溶剂

Q 体积 氯仿 氯仿 : (24:1) 使 彻底 混合 30s

注意 ”由 苯酚 氯仿 溶解 氯仿 除去 微量 苯酚 涉及 使

。43

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

场合 氯仿 除去 标准 操作 苯酚 氧化 影响 核酸 质量

(上 ) 转移 RNase 试管 0.1 FAR 3mol/L 乙酸 (pH 5.2) 2.5 体积 冰冷 95%%

@ 20C RNA.

注意 沉淀 核酸 浓度 核酸 复合 溶解 沉淀 离心 收集 悬浮 适量 缓冲 含有 RNA 清楚 20C 样品, 保证 RNA

© 离心 沉淀 回收 RNA, Corex 玻璃 离心 4C、9000Xg 30min; 微量 离心 4C 室温 台式 离心 离心 速度 离心 10min。

© 乙醇 70% 75%% 洗涤 RNA 沉淀 2 3 70%% 75%% 乙酸 ) 溶解 溶解 沉淀 核酸

@ 试管 空气 简单 干燥 95% 利于 RNA 样品 RNA 样品 乙醇 沉淀 形式 保存 70C, 定量 适量 缓冲 707C ) 。107 细胞 产生 75~100pg RNA, 取决 细胞

5.3.2 裂解 缓冲

没有 什么 方案 抑制 RNase 效果 缓冲 细胞 抑制 RNase 效果 〈Chirgwin ,1979) 缓冲 彻底 解除 蛋白 空间 结构 核糖 核酸 RNA sarkosyl (后面 章节 讨论 ) AEB MRM 蛋白 裂解 缓冲 需要 添加 核糖 核酸 抑制 使 缓冲 RNA 室温 操作 裂解 缓冲 离散 生物 破坏 ), 破坏 细胞 同时 细胞 破坏 基因 DNA、 均一 RNA(ChnRNA)、 线 DNA RNA, 细胞 RNA 除去 回收 DNA。 梯度 〈(Glisin ,1974; Ullrich ,1983) 乙酸 (Zarlenga Gamble, 1987) 密度 离心 (背景 知识 Cooper,1977)。 . DNA 密度 1. 5 1. 7g/ml,RNA 密度 1. 8 2. 0g/ml, 密度 方便 读者 9 介绍 作为 工具 离心 技术 基础

- - 差异 DNA, RNA 蛋白质 〈Chomczynski Sacchi,1987), 常用 快速 纯化 RNA 技术 利用 酸性 pH 溶剂 RNA DNA 差异 快速 方法 生物 样品 RNA、DNA (和 蛋白质 ) (Majumdar ,1991; Chomczynski,1993) 介绍 方法 方法

试剂 RNA 方法 主要 缺点 细胞 RNA 细胞 RNA。 均一 RNA (hnRNA) 剪接 mRNA 混合 RNA (根据 RNA 适合 RNA).

严谨 研究 使 缓冲 RNA 忽视 保证 缓冲 a ILC RNase 污染 缓冲 存在 情况 RNase 活性 彻底 抑制 除去 RNA Xt RNase 降解 非常 敏感 根据 4 介绍

44 -

5 RNA 策略

Nase RNA 破坏

5.4 含有 RNA

含有 盐酸 裂解 缓冲 重复 产生 质量 RNA。 试剂 非常 特性 蛋白 质变 试剂 (Cox, 1968; Nozaki Tanford, 1970; Gordon,1972) 整个 样品 回收 RNA 细胞 溶解 细胞 破坏 核酸 包括 细胞 RNA、

DNA 细胞 RNA。8 〈B-ME) eA a)

促进 蛋白 质变 核糖 核酸 cued CELE

变性 ), 试剂 断裂 a ae a. ER eo

需要 RNase 抑制 常用 试剂 (DTT), 缓冲 DTT.

目前 基本 方案 利用 裂解 RNA、DNA 蛋白质。 方案 例子 CsTFA - 裂解 密度 离心 - (图 5.3 缓冲 细胞 5.3) 常常 RNA 缓冲 RNA 方法 : EB (CsCl) 直接 沉淀 CsCl CsTFA MB CBM CCSTFA) BRL, Rae BE 获得 RNA (尽管 繁琐 ) 需要 采用 费时 梯度 离心 方法 纯化 RNA。

当心 “如果 熟悉 正确 操作 适当 技术 协助 使 致命

温和 NP-40 方法 利于 细胞 RNA 含有 裂解 缓冲 RNA 细胞 RNA (包括 细胞 RNA 细胞 RNA)。 5.4 比较 细胞 RNA 细胞 RNA

a bcd

5.4 细胞 RNA 细胞 RNA a b: 20ug 细胞 RNA (NP-40 裂解 RAH. Anam: 氯仿 除去 蛋白 RNA 样品 ) c AFL d: 25pg 细胞 RNA〈 - - 获得 )。 <c d , 28S rRNA RNA, hnRNA。 c< d 明显 荧光 少量 DNAS. Bik Ai A DS-24 照相 Polaroid 667 MR. Ht RE Di versifield Biotech. Inc. 产品

e 45 °

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

5.5 - - 技术

ZT), HAR RARE RNA 获得 质量 RNA。 缓冲 缓冲 介绍 迅速 彻底 破碎 培养 细胞 细胞 迅速 消除 RNase 活性 使 RNase 含量 非常 丰富 )。 方案 FA DNA All RNA 密度 差异 离心 RNA DNA 。1987 Chomezyn- ski Sacchi 介绍 纯化 完整 RNA 方法 含有 裂解 缓冲 样品 CsCl 离心 方法 相关 方法 - 细胞 迅速 RNA; 氯仿 利于 实验 饱和 酸性 乙酸 混合 制备 - 溶液 ,TRIzol TRI 试剂 ) 商家 购买 提供 试剂 实验 方案 进行 改进 ,RNA DNA 蛋白质 蛋白 界面 沉淀 离心 回收 RNA 方法 1h 10° 细胞 Img RNA。

5.5.1 实验 方案 : - -

© !

Q 离心 收集 细胞 105 细胞 悬浮 100 溶液 D

4mol/L

25mmol/L 柠檬 ,pH7.0

0.5% N- (sarcosy]l)

100mmol/L 2-3 3 Z

FA God Bat Bas FE KO TT ER Et BN A ih A SG He EL Be KE A HT HE

注意 100mm 培养 直接 1. 0 1. 5ml 溶液 D 细胞 直接 裂解。 培养 直接 裂解 细胞 需要 裂解 试剂 溶液 黏度 裂解 细胞 scraper (Corning; 货号 3010) 缩小 操作 2. 2ml 微量 离心

G) 转移 @ 使 溶液 D 裂解 缓冲 毫升 :

0. lm] 2mol/L 乙酸 ,pH 5. 2

1. 0ml 饱和 苯酚 )

0. 2ml Ath: SEDC Be 试剂 倒置 仔细 充分 混合 试剂 剧烈 05

® 样品 冷却 15min。 4 离心

© 含有 RNA 0. 75 体积 冰冻 20C 1h 沉淀 RNA.

注意 ”操作 规模 使 螺旋 玻璃 玻璃 适当 套子 沉淀 回收 RNA,

@ 4C 10000xg 20min, ‘an FAA him, BF.

当心 ”该 方案 离心 离心 超过 离心

@ ¥f RNA GLE MIKA F 300 溶液 D “〈 wy 转移 1. 7ml RNase 微量 离心

。46

#52 RNA 策略

0. 75 体积 冰冻 20 放置 1h 沉淀 RNA.

© 微量 离心 4C 12000Xg 离心 10min,

@ 沉淀 500p1 70% 3 4 次。 RNA 沉淀 没有 移动 离心 空气 干燥 微量 离心 残余 乙醇

注意 95%% 乙醇 洗涤 样品 干燥

@ # RNA WFR ARN TE 缓冲 碳酸 (DEPC) 65°C 保温 10min 利于 RNA 溶解 RNA 样品 干燥 彻底 需要 fe 65°CfRifd 10min。 直接 储存 乙醇 沉淀 RNA。 RNA 浓度 RNA 溶液 储存 80C 用。 避免 反复 RNA 溶液

5.6 @BHBBYS ba SAUL B Bi A A Fr SE Ee fA BE A ee BY Ad 2 2 RNA。 形成 混合 进行 生物 相互 需要 除去 RNA 制备 DNA。 RNA、DNA 蛋白 密度 微小 差别 5.3), 密度 梯度

5.3 密度 离心 密度 范围 Ges ee

1.5~1. 7g/ml

密度 梯度 离心 确切 密度 离心 生物 密度 梯度 介质 运动 介质 密度 生物 密度 相等 离心 技术 CsCl. CsTFA CszSO4@ 介质 密度 密度 相等 积累 那里 直到 离心 结束

情况 ,RNA 任何 介质 密度 离心 RNA WEES FRB. WRT 密度 增加 ,RNA 质粒 DNA 形成 RNA

5.6.1 AW

CsCl 密度 离心 使 CsCl 溶液 形成 线性 梯度 溶液 细胞 裂解 ) CsCl 溶液 离心 CsCl 进行 密度 离心 需要 制备 梯度 CsCl 梯度 变化 密度 超过 密度 生物 结果 密度 RNA, 沉淀 离心 底部 心力 生物 它们 平衡 需要 密度 梯度 离心 效果 实际 离心 取决 离心 进行 RNA 制备 通常 离心 台式 “微量 离心 ”( Sorvall Dis- covery M150 SE, 5.5) 完成 相同 需要 3h,

5.6.1.1 实验 方案 : CsCl 梯度 离心 方法

介绍 RNA 方法 Glisin (1974)、Ullrich 〈1977) 、Chirgwin

1.7~2. 0g/ml

@ 使 材料 甘油 ficoll, metrizamide 蔗糖 价格 便宜 进行 核酸

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

(1979) RNA 方法 进行 修改

QO FB!

Qa H WAAR HM: 500X g 离心 5min 收集 细胞 磷酸 生理 盐水 (PBS) CL 溶液 A 8.0g NaCl, 0.2g KCl, 1.44g NazHPO,, 0. 24g KH2PO.) 洗涤 细胞 沉淀 除去 PBS。 RNase 主要 问题 4C 冰冷 PBS 洗涤 细胞

Gb 针对 : 快速 收集 冰冻 转移 适当 裂解 缓冲 (步骤 @) 快速 冷冻 实验 桌面 ) 使 粉碎 方式 粉碎 迅速 转移 裂解 缓冲 使 融化

5.5 Sorvall Discovery M150 SE 注意 SRA 6 提取 RNA 详细 知识 微量 离心 半径 @ MA 5 FAR 体积 ) HAR: 产生 离心 (2) RE. 6mol/L 盐酸 (2K 4mol/L FRABIM) 使 密度 RNA 制备 3h 5mmol/L 柠檬 (pH 7.0) 完成 。Kendro 0.5% sarcosyl Laboratory Products 10mmol/L BME (用 )

温和 沉淀

注意 CRRA. ARMA RMB eA.

注意 2 CMABMEZA, HRMBIIA MATE A CAILA. EAR, BRR RM AB) 37°C, VHB BAMA PME 浓度 200mmol/L, 即使 必要 0. 2um

注意 3 HREM SMA MM PME RA.

通过 19 针头 ; ;

CU Polytron ) 室温 破碎 细胞 情况 ,产生 .

物理 断裂 基因 DNA, 基因 DNA 产生 阻止 RNA 沉淀

注意 ”为 获得 质量 RNA 回收 避免 溶液 形成 气泡

© 2. 5ml 裂解 lg 固体 CsCl1。 相同 密度 RNA 需要 方法 CsCl.

© ¥ 5. 7mol/L CsCl ( 100mmol/L EDTA, pH 7.5) 转移 离心 垫底 溶液 整个 离心 25%% 纤维 (polyallomer) 离心 必须 兼容

@) 细胞 裂解 充满 离心 离心 离心 套子 盖子 样品 离心 ) 重量 差异 超过 0. 05g。 厂家 离心 离心 样品 重量 厂家 规定 精确 平衡 产生 灾难

48 -

#58 RNA 策略

离心 离心 离心 式微 离心 需要 3 4h。 指南 明了 纯化 RNA 需要 离心 注意 离心 冷却 离心 导致 CsCl 沉淀 破坏 离心 室温 进行 @ 离心 5ml 特别 仔细 破坏 离心 底部 沉淀 研究 THRE 80%% 溶液 倾泻 RNA 沉淀 面部 止血 刀片 Bunsen 离心 切割 RNA 沉淀 5.6)。

注意 离心 蛋白 /或 DNA 黏附 离心 ie! 离心 切除 ,溶解 回收 RNA 蛋白 /或 erry DNA 污染 离心 底部 RNA 沉淀 离心 (a) (b) (c) 消除 蛋白 /或 DNA RNA 污染 5.6 密度 梯度 离心 回收 RNA RNA 缓冲 方法 。(a) 除去 梯度 溶液 RNA : 演出 ; (b) 刚好 RNA 切割 10mmol/L Tris, pH 7.4 ; (co) RNA 晶状体 摇篮 5mmol/L EDTA 方法 回收 RNA 避免 离心 0.1% SDS (最 ) 残留 DNA、 白质 污染 RNA 样品

然后 RNA 溶液 微量 离心 RNA 样品 RNA 溶液 转移 15ml 离心

注意 ”这 纯化 获得 RNA 沉淀 常常 含水 缓冲 溶液 溶解 。RNA 沉淀 难度 沉淀 20C 融化 RNA 沉淀 溶解 沉淀 溶解 帮助

@ 2 体积 氯仿 OE 〈4 : 1, ) 2 体积 氯仿 : TE (4 : 1, ) 微量 离心

@ 体积 缓冲 ::

10mmol/L Tris, pH 7. 4

5mmol/L EDTA

0.1% SDS (Ree i AKAN)

合并

注意 ”氯仿 RNA 制品 残留 污染

® 0. 1 体积 3molL 乙酸 (pH 5.2) Al 2.5 体积 冰冷 95% #£— 20°C it#E RNA RNA 液体 离心 进行 沉淀 15ml Corex 玻璃

GO EMEA DE POEM. FA 12000Xg 离心 10min (如 4C )。 Corex 玻璃 套子 9000Xg 离心 20min WE.

当心 ”进行 RNA 心力 绝对 超过 离心 离心

© 仔细 70%% 洗涤 70% 95 % 乙醇 洗涤 样品 干燥 彻底 干燥 RNA 样品 明智

。49

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

© 乙醇 沉淀 方式 RNA 储存 80C, RNA 定量 80C RNA 样品 )。 10° 细胞 产生 50 75pg 质量 非常 RNA, 具体 产量 取决 细胞

5.6.2 =AZC MR?

CsTFA (Amersham Biosciences, Piscatway,; NJ) 密度 RNA #1 DNA 优秀 介质 使 方法 CsCl CszSO4 离心 自动 形成 密度 梯度 阴离子 使 CsSTFA 具有 产生 特别 质量 核酸 制备 特性

D 密度 溶液 。CsTFA 溶解 形成 密度 达到 2. 6g/ml 溶液 密度 核酸 密度 CsCl 达到 密度 1. 7g/ml 阴离子 存在 核酸 蛋白质 溶解 核酸 密度 CsCl 溶液 密度 白质 容易 核酸

@ 密度 RNA RNA 密度 降低 密度 使 RNA 密度 形成 CsCl CszSO4 溶液 进行 密度 离心 ,RNA 容易 形成 白质 、DNA RNA 同一 CsTFA 梯度 产生 (Zarlenga Gamble, 1987). 另外 制备 使 RNA 沉淀 梯度 5. 7), CsCl 梯度 方式 回收 RNA.

5.7 离心 生物 蛋白 , 密度 梯度 离心

edi: (18ml) 铺盖 19ml CsTFA(p=1.51g/ml) ,125000Xg 离心 16h, “4 3.5mg RNA 沉淀 管子 底部 (p= 1.62 ~ 1.9g/ml) RNA ht DNA 含量 0.4% CH DNA 检测 结果 )。 原来 溶液 界面 附近 形成 DNA, p=1.6g/ml, WB RNA 蛋白 o 1. 2 1. 5g/ml。Amersham Bioscience

@) 蛋白 质变 需要 变性 ,CsTFA 溶解 蛋白 使 核酸 CsTFA 离心 费时 溶剂 进行 操作 蛋白酶 苯酚 hnRNA 基因 核酸 降解 降低 CsTFA 优秀 核酸 抑制 ,CsTFA 利于 完整 核酸

® 提高 纯化 RNA 。CsTFA 回收 核酸 。CsTFA 阴离子 (salting-in) 效应 离子 硫酸 离子 〈salting-out) 效应 效应 减少 蛋白 核酸 损失

© 溶剂 溶解 溶剂 CsSTFA 溶解 利于 核酸 CsTFA 溶液 回收 梯度 除去 直接 进行 乙醇 沉淀

© 温度 CsSTFA 熔点 CsCl 熔点 核酸 核酸 DNA: RNA 完整 DNA Fil RNA.

—DNA

@ Amersham Bioscience 数据 实验 方案 50

5 RNA 策略

密度 梯度 离心 缺点 密度 梯度 材料 CsCl. CsTFA) 价格 昂贵 离心 价格 昂贵 纯化 RNA 杂质 工作 样品 原因 RNA 纯化 试剂 试剂 需要 离心 需要 密度 梯度 离心 RNA。 原因 讨论 CsC1l 方案 《前 介绍 ) CsTFA FS.

5.6.2.1 实验 方案 :, CsTFA 梯度 方法

方法 Okayama 〈1987) 原始 方案 进行 修改 介绍 ,RNA 密度 梯度 离心 底部 形成 沉淀 产生 离心 方法 制备 组织 RNA, 方法 修改 使 适宜 材料 25mg 规模 6g 规模 。CsTEFA 梯度 离心 使 纤维 离心

(1) CsTFA 预先 制备

通常 CsTFA (Amersham Biosciences No. 17-0847-02) 密度 〈2. 0 0.05)g/ml。 100mmol/L EDTA(pH 7.0) 制备 (1. 51 0.01) g/ml 工作 溶液 。100ml 溶液 制备 :

Hi (> ml CsTFA(o 产品 密度 ), 40ml 溶液 [100mmol/L Tris (pH 8.0),

100mmol/L KCl, lmmol/L EDTA] #f (so——> >) ml LHW WH KIBA. CsTFA LEK

密度 适应 特殊 实验 方案 产品 厂家 提供 特定 密度 CsTFA 溶液 制备 准确 方案

QO RFE!

Ga 培养 : 500Xg 离心 5min 收集 细胞 除去 PBS (1L 溶液 含有 8. 0g NaCl, 0.2g KCI,1. 44g NazHPO,,0.24g HPO4) PBS 溶液 RNase 主要 问题 4C 冰冷 PBS 洗涤 细胞

GOb : 快速 收集 冰冷 溶液 转移 适当 裂解 @ ) 快速 冷却 实验 敲打 样品 进行 粉碎 方式 样品 迅速 转移 裂解 缓冲 融化

注意 6 详细 介绍 提取 RNA 方法

@ 细胞 沉淀 18ml 5.5mol/L FRA RMIARW 〈5. 5mol/L FRA WM, 25mmol/L 柠檬 ,0.5% sarcosyl, FR NaOH if pH 7.0, 使 200mmol/ L BME),

注意 盐酸 缓冲 替换 使

注意 2 8BME 4C 储存 使 适当 体积 ALMA we MAF 37"C 室温 BME 200mmol/L 浓度 0. 2um Hye 溶液

注意 3 保证 缓冲 、CsTFA BME 超速 离心 兼容

手工 19 针头 Dounce ) BOLD AR AT 《如 Polytron 33K at) 破碎 细胞 情况 断裂 基因 DNA DNA 断裂 阻止 缺乏 DNA 生成 阻止 RNA ive.

注意 ”为 回收 质量 RNA, 避免 溶液 形成 气泡

« 51

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

© 仔细 裂解 转移 离心 50ml) 。1500Xsg 离心 5min 沉淀 溶性 物质 © 避免 干扰 沉淀 透明 裂解 离心 OQ 仍然 黏稠 19 针头 进一步 DNA 直到 黏度 降低 重复 针头 10 12 足够

@@ 15C 5000xg 20min 除去 细胞 离心 UGE Beit is AD

Yi ALARA RS ARARE RE CERAH RAB SA,

@ 5. 5mol/L FRARMAR GLO) 液体 f(a 5. 4).

5.4 FA CsTFA 进行 RNA 纯化 体积 速度 选择

Beckman

/mg /mg #3 CsTFA/ml 样品 /ml 125000 X g 需要 RPM

YE: Amersham Biosciences 数据 9 9-1 9-2 提供 物理

@ 根据 样品 数量 体积 合适 9 9-1 9-2 使 CsTFA 使 纤维 硝酸 CsSTFA 溶液 离心 样品 CsSTFA 溶液 直至 离心 顶部

@ 平衡 样品 HET. RAEN) 误差 0.05g。 样品 离心 精确 平衡 离心 造成 灾难

@ 离心 15C 125000Xg 离心 16 20h。 ,RNA 沉淀 离心 ,DNA 离心 2/3 形成

离心 管子 直至 DNA 除去 DNA 底部 lom 连续 溶液 溶液 离心 倒置 3 4 Kimwipes 滤纸 5min 残余 溶液

@ 刀片 离心 底部 5.6), 足够 使

适当 体积 缓冲 LDEPC pH 7.4 TE (10mmol/L Tris-Cl, pH 7.4; Immol/L EDTA)] 直接 溶解 RNA Ue.

注意 ”建议 体积 〈100 200rl) 缓冲 回收 RNA 沉淀 / 利于 RNA 彻底 溶解 RNA 保持 浓度 使 操作 重复 沉淀 离心

Rit} RNA 溶液 混合 65C 10min

@ 简单 离心 低速 离心 除去 溶性 物质

52

1000 19.0 18.0

5 RNA 策略

测定 RNA 浓度 8 )。 沉淀 RNA 方法 浓缩 RNA 80C

5.7 RNA DNA

注意 方案 细胞 RNA。 方案 操作 复杂 公司 现在 提供 生物 样品 RNA 装置 树脂 使 RNA 操作 简便 方面 差别 介绍 能够 同一 生物 样品 同时 回收 RNA, DNA 蛋白质 (4 Majumdar ,1991; Chomczynski,1993) 方法 厂家 购买 相应 产品

介绍 方法 需要 特殊 设备 实验 使 设备 技术 介绍 裂解 DNA Fl RNA WH fi HS pH 调节 (Chomcznski Sacchi, 1987) 酸性 RNA, DNA 界面 含有 RNA 离心 剩余 溶液 pH ,DNA - 方案 乙酸 (pH4.9) 混合 酸性 体积 : 氯仿 : RR (25 : 24 : 1) SDS/EDTA 裂解 (pH8.7), pH 接近 7.6.

直接 裂解 细胞 首先 离心 收集 细胞 进行 裂解 裂解 缓冲 细胞 操作 剧烈 基因 DNA。 纯化 基因 DNA, 悬浮 裂解 ,DNA 断裂 片段 接受

5.7.1 实验 方案 : 同时 RNA DNA

OQ !

@ 预先 按照 5.2 制备 : 氯仿 : 试剂 饱和 2 3

Ga 组织 培养 : 吸取 方法 培养 冰冷 PBS (1L 溶液 含有 8. 0g NaCl, 0.2g KC1,1.44g NazHPO,0. 24g KH2POQ.) 洗涤 细胞 2 5ml。 细胞 培养 冷冻 15min 进行 裂解 帮助 吸取 方法 PBS。 100mm 培养 (BP 4X 106~5 X 108 细胞 ) 2ml 冰冷 裂解 缓冲 (10mmol/L EDTA, pH 8.0; 0.5% SDS)。 培养 倾斜, 保障 细胞 接触 裂解 缓冲 保温 3min。 彻底 振荡 培养 收集 细胞 10° 细胞 使 200pl 裂解 缓冲

注意 ”在 冷却 试剂 细胞 控制 RNase 活性 方法 研究 根据 裂解 放置 15min 影响 细胞 生化 影响 实验 结果

Gb : (100mg) 毫克 250ml 裂解 缓冲 (10mmol/L EDTA, pH 8.0; 0.5% SDS)。 室温 Dounce 温和 使 Polytron Jat 3K, AMI ZEA DNA 生前 6

e 53 e

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

© 裂解 转移 冷却 15ml 离心 缩小 规模 微量 适合 染色 释放 使 溶液 黏度 增加 使 刮刀 裂解 定量 回收 Ab, tH AT A 1~2ml WH C1Ommol/L EDTA; 100mmol/L 乙酸 ,pH 4.9) 平板 定量 回收 裂解

@ 体积 冰冷 缓冲 方法 @)。 保证 离心 氯仿 兼容 © 温和 倒置 溶液 混合 没有 混合 放置 提高 产量

© 适当 离心

当心 ”离心 速度 超出 规定 速度 限制 离心 离心 (g).

(1) RNA 回收

@ 收集 转移 放置 离心 白质 界面 界面 回收 DNA RNA KAR. KR BI. BR 进行 DNA 操作

@) 体积 缓冲 “制备 @)。

O 方法 离心 离心 扰动 界面 )

@ # 4ml RNA WR. MA 500pl 冰冷 1ImolVL Tris-Cl (pH8.0) 200pl 5mol/L NaCl。 混合 12ml (2.5 体积 ) 冰冷 95%% 混合 207C 放置 1h

适当 离心 ,9000Xg 离心 10min 收集 RNA 沉淀 4C 离心 心地

® A 70%H CBRNE 2 3 回收 沉淀

@ 样品 空气 干燥 95%

& RNA Wye F 200] KAA TE 缓冲 (10mmol/L Tris-Cl, pH 8.0; lmmol/L EDTA) 溶液 放置 lh. REA—-T+HHROSS. TUBM—HKeAW TE - 缓冲 离心 溶液 合并

4% 300p1 RNA WR, MMA 6yl 5mol/L NaCl 0. 8ml KANAB. WAR EM EK 5 10min。 溶液 乳白 RNA 沉淀 沉淀 直接 进行 80 放置

微量 离心 离心 10min, 4 离心。 仔细 除去 除去 乙醇 干燥 RNA。

RNA 悬浮 体积 缓冲 DEPC ) ,在 放置 15min 使 样品 溶解 溶解 需要 样品 干燥 程度 干燥 ,RNA 样品 需要 放置

测定 RNA 浓度 溶液 80

(2) DNA 回收

QO @ 保存 除去 少量 界面 物质 消除 RNA 污染 操作 通常 必需 操作 残余

s 54 °

5 RNA 策略

RNA。 DNA RNase 保温 污染 RNA。

@ 体积 1mol/L Tris 剩余 / 。1lmol/L Tris ARAN pH %& 10.5。 振荡

注意 ”该 操作 ;, 制造 环境 DNA

2000xXg 15min, 4C 离心

重复 @ @ 操作 混合 它们 离心

@ Tris: DNA 溶液 体积 氯仿 : HORE 24 : 1) 彻底 混合 离心 仿 离心

0. 1 体积 3mol/L NaAc(pH 7.0) 2.5 体积 95% DNA。 旋转 倒置 溶液 混合 彻底

注意 ”乙醇 引起 遗传 材料 快速 沉淀 纤维 (500Xg) ty 2 3min 回收 DNA。 硅烷 Pasteur 乙醇 溶液 取出 基因 DNA。 管子 限度 减少 DNA 玻璃 黏附

@ FA 70% CBRE DNA 3 500xl。 沉淀 DNA 转移 适当 体积 TE 缓冲 (pH 8.0) 溶解 DNA RE.

5.8 aA #

现在 厂商 提供 试剂 合用 核酸 研究 节约 节约 试剂 增加 产量 肯定 增加 需要 RNA 产量 [例如 细胞 RNA、poly(A) RNA]j, 保障 获得 RNA 重要 电话 询问 厂家 代表 国际 销售 索取 试用 试剂 免费 使 试剂 ) 特定 产品 兴趣 乐于 提供 免费 使 打折 产品 使

合乎 试剂 甚至 使 溶剂 苯酚 氯仿 传统 使 剂量 使 溶剂 试剂 实验 方案 进行 优化 使 溶剂 使 剂量 使 溶剂 必须 实验

5.8 核酸 硅胶 滤器 5.8.1 硅胶 技术 管内 硅胶 结合

缓冲 细胞 洗涤 核酸 领域 重要 创新 硅胶 滤器 .最 纯化 核酸 样品

足够 标准 微量 离心 脱出 室内 常用 滤器 滤器 玻璃 纤维 构成 塑料 底部 标准 1. 7ml 微量 离心 滤器 插入 标准 1.5ml 离心 (图 5.8)。 ”的 显示 2. 2ml 微量 离心 ) 生物 样品 纯化 RNA, ”GenElute : Sigma-Aldrich NE

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

精制 操作 获得 RNA DNA, 限制 、cDNA 合成 PCR 核酸 产物 厂家 提供 基于 硅胶 滤器 产品 溶液 提供 环境 ,RNA DNA 硅胶 结合 系列 清洗 浓度 核酸 柱子 微量 离心 微量 操作 需要 特别 设备 纯化 精制 完成

5.9

(Peppel Baglioni, 1990; Salvatori ,1992; Zolfaghari ,1993) 离子 SDS 抑制 核糖 核酸 活性 缓冲 密度 梯度 离心 快速 细胞 RNA。 适宜 原核 细胞 RNA, 形式 使 试剂 方法 使 试剂 使 体积 放大 10° 细胞 100ng RNA。 方法 (Peppel Baglioni,1990), 介绍 修改 方法 进一步 普遍 使 AS AY FH HEP BS RNA 试剂 基础

5.9.1 实验 方案 : 硫酸 乙酸 快速 RNA

© RFE!

Qa 培养 : 含有 培养 除去 生长 介质 ,用 PBS IL HRA 8.0g NaCl, 0.2g KCl, 1.44g¢ Naz HPO ,0. 24g KH2PO.) PBS 裂解 缓冲 (2% SDS; 200mmol/L Tris-Cl, pH 7.5; 0.5mmol/L EDTA) 直接 细胞 平方 厘米 50pl 裂解 缓冲 培养 直到 细胞 彻底 裂解 使 室温 储存

Ob : 快速 收集 冰冷 溶液 迅速 转移 含有 裂解 缓冲 (Qa 快速 冷冻 实验 打击 迅速 转移 裂解 缓冲 融化 毫克 样品 lml 裂解 缓冲 手工 (经 19 针头 反复 Dounce ) MAP RMAR CM Polytron )。 避免 溶液

@ 裂解 转移 微量 离心 〈1. 7ml 2. 2ml) +. HHT aA 15 20

® 步骤 @ 使 500pl 裂解 缓冲 150nl 乙酸 〈50g 乙酸 llml 乙酸 100ml) 使 制备 溶液 储存 20"C

© 小心 离心 15 20 保证 溶液 彻底 混合

© 放置 3min 超过 5min

@ 微量 离心 速度 室温 离心 5min。

心地 回收 离心

@ 300nl 氯仿 : HME (24 : 1, ) 混合 30s 白质 情况 离心

O 冷却 离心

@ 体积 650pl) 冰冷 沉淀 RNA。 20C 30min,

56

5 RNA 策略

© 室温 离心 Smin 收集 RNA 沉淀

®B 心地 除去 70%% 沉淀 2 3 离心 RNA 沉淀 乙醇 。RNA 沉淀 空气 干燥 95% 利于 RNA 样品 干燥

@ RNA 尽量 体积 TE 缓冲 DEPC RNA 浓度 储存 80C 用。

5.9.2 实验 方案 : 原核 RNA

快速 RNA 方法 Peppel Baglioni (1990)、Salvvatori (1992) 、Zolfaghari (1993) 方法 修改 使 裂解 缓冲 使 标准 NaOH/SDS 裂解 缓冲 NaOH/SDS 裂解 缓冲 破碎 细菌 细胞 质粒 使 RNA 严重

© RFE!

@ 预先 : 制备 NP-40 裂解 缓冲 乙酸 4C 溶液 架子 放置 使 检查 溶液 微生物 污染

NP-40 裂解 缓冲 : 250mmol/L fe HF; 2Ommol/L EDTA, pH 8.0; 0.75% NP-40 (注意 : 混合 消毒 NP-40 )

乙酸 顺序 制备 ) :

80%% 体积 制备 3mol/L CARH

FA OK BS PR aly pH 5.5

100ml 溶液 100g HAMA 〈GTC) 彻底 混合

@ 离心 收集 100ml 培养 细菌 细胞

1.5ml 裂解 缓冲 2ml 冰冷 乙酸 混合 混合 缓冲 悬浮 细菌 细胞 保温 裂解 10min。

© ,在 4C (10000Xg) 10min。 保证 离心 离心 裂解 微量 离心 离心 同一 培养 获得 RNA。 操作

@) 转移 离心 沉淀 固体 转移 离心 固体, 少量 原来 管子 放置 15min,

@ ¥F 10000 g 离心 10min。 ,在 4C

离心 体积 氯仿 : (24 : 1) 彻底 混合 3min 带宽 氯仿 : SORE (24: 1)

© 离心 0.6 20"C 放置 20min 沉淀 RNA。

@ 10000Xg 离心 10min 收集 RNA。 4 离心

@ 仔细 70%% 消毒 稀释 乙醇 获得 ) 洗涤 95% 100% 利于 样品 干燥

« 57 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

@ 样品 空气 干燥 悬浮 TE 缓冲 RNA 浓度 纯度 保存 80C 即使 乙醇 形式 储存 80'YC

5.9.3 实验 方案 : 酵母 RNA

酵母 细胞 快速 回收 RNA。 方法 酵母 RNA。 方法 玻璃 酵母 培养 方式 破坏 细胞 超级 结构 操作 繁琐 缩小 规模 获得 RNA

介绍 RNA 方法 利用 苯酚 SDS 样品 融化 促进 RNA 样品 冷凝 酵母 细胞 使 细胞 释放 使 RNA DNA 进行 RNA 纯化 常用 技巧 介绍 方法 Schmitt (1990) 方法 进行 改进 快速 RNA, 需要 细胞 培养

@O 预先 : 0. 5ml 酵母 培养 CE YPD 培养 培养 )@ 接种 15ml 管子 30 温和 振荡 培养

注意 ”必须 盖子 管子 管子 阻止 溶液 挥发 避免 微生物 污染

@Q@ 早晨 培养 1 : 40 稀释 YPD 培养 培养 4h

@ 4 5ml 1%, Bt (500Xg) 5min 收集 酵母 细胞

© 细胞 沉淀 悬浮 400ml AE 缓冲 (50mmol/L ZRH, 10mmol/L EDTA, pH 5.2) 迅速 彻底 悬浮 AE 缓冲

注意 ”如 使 AE 缓冲 RNase 抑制 通常 需要 RNase 抑制 AE 缓冲

© 细胞 悬浮 转移 离心 40p1 10% SDS。 倒置 4 AE 缓冲 液体 增加 10%SDS 体积

© 体积 (Alm) AE 缓冲 饱和 生物 苯酚

重要 提示 ”不 苯酚 pH。 参阅 3 苯酚 制备

© 样品 仔细 彻底 混合 65°C Rid 4min。

乙醇 -干冰 干冰 快速 冷却 苯酚 晶体 乙醇 -干冰 使 20C 样品 30min

© 微量 离心 离心 〈12000Xg, 速度 ) 2min,

注意 ”一 沉淀 含有 细胞 离心 底部

@ 仔细 取出 干扰 蛋白 界面 离心 体积 室温 苯酚 : 氯仿 : SE (25 : 24 : 1) 5.2)。 2 3 仔细 彻底 混合

QD 速度 离心 2min,

@ 酵母 基因 DNA 纯化 常常 酵母 细胞 zymolyase 保温 裂解 细胞 产生 原生 理会 导致 温和 裂解 DNA 回收 RNA 必用 zymolyase 细胞 @ YPD 培养 FH) 含有 10g 酵母 、20g BAKA 20g 葡萄 ,YPD 培养 葡萄 糖化 ”的 结果 。58

5 RNA 策略

© 仔细 回收 转移 离心 干扰 蛋白质 界面 (如果 )

(B 溶液 体积 氯仿 氯仿 : (24 : 1) 离心 离心

@ tn A 0.1 54K FL 3mol/L NaAc (pH 5.2) 2.5 体积 95% 乙醇 样品 20C RNA.

© 离心 收集 沉淀 4 离心

@ 溶液 70% /30%DEPC 洗涤 3 500x1。 空气 干燥 沉淀 彻底 干燥 95%% 乙醇 洗涤 样品 干燥。 保存 样品 储存 80'

Kit te BY FF 25 ~ 50pl RNase) TE 缓冲 (10mmol/L Tris, lmmol/L EDTA, pH 7.5) #.

测定 RNA 浓度 纯度 保存 80C 10ml 酵母 获得 150ng 左右 RNA。

© RNA, 电泳 检测 RNA 样品 结构 完整

5.10 纯化 RNA 短期 保存 保存

RNA 样品 正确 储存 实验 热烈 讨论 课题 纯化 RNA 样品 深刻 负面 影响 问题

@ RNA 细胞 纯化 ?

Q 实验 没有 80'C 储存 ?

@ RNA 7~10 使 ?

® RNA 含水 缓冲 TE 缓冲 ) 重新 溶解 ?

细胞 收集 快速 冷冻 储存 80C 方式 储存 1 纯化 RNA。 裂解 缓冲 融化 迅速 缓冲 80 浆液 进行 RNA RNA 乙醇 沉淀 方式 储存 80C 稳定 RNA 储存 没有 问题 RNA 半衰期 样品 @ 影响 使 RNA 乙醇 方式 储存 20C RNA 溶液 TE 缓冲 ) 开始 计算 RNA 储存 。TE 缓冲 整合 方法 Mg:+ EDTA 浓度 影响 PCR 离子 重金 离子 非特 异性 RNA 必需 离子

除了 实验 方案 特别 标明 操作 进行 操作 TE 缓冲 RNA。 常用 操作 确定 RNA 浓度 RNA 溶液 保存 80C。 RNA 溶液 反复 RNA 抑制 RNA 样品 进行 保存

@@ 植物 ) 获得 纯化 RNA 乙醇 沉淀 形式 80C 稳定 保存 RNA 溶液 207C 保存

59

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

RNA 抑制 通常 必需 副作用 核酸 抑制 干扰 操作 RNA 反应 @。

储存 RNA 方法 采用 100%% 酰胺 CChomcezynski, 1992) 提供 酰胺 稳定 形式 FORMAzol (Molecular Research Center, Cincinnati, OH), 4 FORMAzol ,RNA 稳定 2 试剂 实验 使 非常 。RNA 直接 变性 电泳 10 )。 进行 CDNA 合成 CRT- PCR), 4 体积 95 乙醇 沉淀 除去 酰胺 RNA 浓度 0. 2mol/L NaCl 才能 回收 RNA.

RNA 储存 方面 考虑 事情 什么 形式 纯化 RNA 储存 0 安全

oi), 2 Ae oe

Carter, C., Britton, V. G., and Haff, L. (1983). CsTFA: A centrifugation medium for nucleic acid isolation. BioTechniques 1, 142.

Chirgwin, J. M., Przybyla, A. E., MacDonald, R. J., and Rutter, W. J. (1979). Isolation of biologically active ribonucleic acid from sources enriched in ribonuclease. Biochemistry 18, 5294.

Chomczynski, P. (1992). Solubilization in formamide protects RNA from degradation. Nucleic Acids Res. 20, 3791.

Chomczynski, P. (1993). A reagent for the single-step simultaneous isolation of RNA, DNA, and proteins from cell and tissue samples. Bio Techniques 15, 532.

Chomczynski, P., and Sacchi, N. (1987). Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Analytical Biochem. 162, 156.

Cooper, T. G. (1977). “The Tools of Biochemistry,” pp. 309-354. John Wiley & Sons, New York.

Cox, R. A. (1968). The use of guanidinium chloride in the isolation of nucleic acids. Jn “Methods in Enzymology” (L. Grossman and K. Moldave, Eds.), Vol. 12, part B, pp. 120-129. Academic Press, Orlando, FL.

Favaloro, J., Triesman, R., and Kamen, R. (1980). Transcriptional maps of polyoma virus- specific RNA: Analysis by two-dimensional S1 gel mapping. Methods Enzymol. 65, 718.

Glisin, V., Crkvenjakov, R., and Byus, C. (1974). Ribonucleic acid purified by cesium chlo- ride centrifugation. Biochemistry 13, 2633.

Gordon, J. A. (1972). Denaturation of globular proteins. Interaction of guanidinium salts with three proteins. Biochemistry 11, 1862.

Majumdar, D., Avissar, Y. J., and Wyche, J. H. (1991). Simultaneous and rapid isolation of bacterial and eukaryotic DNA and RNA: A new approach for isolating DNA. BioTechniques 11, 94.

Marzluff, W. F., and Huang, R. C. C. (1984). Transcription of RNA in isolated nuclei. Jn “Transcription and Translation: A Practical Approach” (B. D. Hames and S. J. Higgins, Eds.), pp. 89-129. IRL Press, Washington, DC.

Nozaki, Y., and Tanford, C. (1970). The solubility of amino acids, diglycine, and triglycine in aqueous guanidinium hydrochloride solutions. J. Biol. Chem. 245, 1648.

@ ARLE, RNA 曾经 保存 SDS、VDR 酰胺 60 -

5 RNA 分离 策略

Okayama, H., Kawaichi, M., Brownstein, M., Lee, F., Yokata, T., and Arai, K. (1987). High efficiency cloning of full length cDNA: Construction and screening of cDNA expression libraries from mammalian cells. Methods Enzymol. 154, 3.

Peppel, K., Baglioni, C. (1990). A simple and fast method to extract RNA from tissue and other cells. Bio Techniques 9, 711.

Salvatori, R., Bockman, R. S., and Guidon, P. T., Jr. (1992). A simple modification of the Peppel/Baglioni method for RNA isolation. Bio Techniques 13, 510.

Schmitt, M. E., Brown, T. A., and Trumpower, B. L. (1990). A rapid and simple method for preparation of RNA from Saccharomyces cerevisiae. Nucleic Acids Res. 18, 3091.

Ullrich A., Shine, J., Chirgwin, J., Pictet, R., Tisher, E., Rutter, W. J., and Goodman, H. M. (1977). Rat insulin genes; construction of plasmids containing the coding sequences. Science 196, 1313.

Zarlenga, D. S., and Gamble, H. R. (1987). Simultaneous isolation of preparative amounts of RNA and DNA from Trichinella spiralis by cesium trifluoroacetate isopycnic cen- trifugation. Analytical Biochem. 162, 569.

Zolfaghari, R., Chen, X., and Fisher, E. A. (1993). Simple method for extracting RNA from cultured cells and tissues with guanidine salts. Clin. Chem. 39, 1408.

(刘建华 ; SHR)

*。 61

6S RNA

0.1 FARE

体外 模型 进行 基础 研究 研究 优点 数不胜数 体外 实验 完全 准确 解释 体内 生理 现象 疑问 培养 细胞 进行 研究 难以 检测 那些 伴随 自然 现象 实验 操作 产生 许多 微小 微小 生化 变化 采用 样品 甚至 整个 模式 动物 进行 研究 培养 细胞 进行 研究 容易 模式 动物 进行 研究 难度 培养 细胞 进行 研究 优点

6.2 @wMBeeka dome

培养 细胞 质量 RNA,, RNA 容易 原因 cel RNA 必须 破坏 除去 结构 培养 细胞 RNA 细胞

裂解 缓冲 通常 含有 相当 苛刻 满意 必需 Eap 使 破碎 满意 获得 RNA。 RNase, RNA。 消除 障碍 采用 剧烈

RNA, RNA WEE 细胞 RNA、 RNA, 打算 获得

RNA )。 收集 冷冻 保存 80C 方便 RNA。

i piel ese 鉴定 实验 操作 行为 产生 特异 确定 正常 理学 必须 RNA。 eT sa RNA 困难 ie “病理 现象 ”稀少 病人 同意 才能 采集 样本 获得 样品 研究 工作 知道 HIV 肝炎 病毒 样品 危险 病毒 流行 广 培养 细胞 RNA RNA, 修改 RNA 策略 储存 难度 保证 参与 实验 安全

尽管 转化 细胞 失去 接触 抑制 体外 形成 斑点 斑点 顶部 相对 少量 细胞 RNA, 那些 堆积 细胞 避免 细胞 连接 支撑 Cma-

trix),

e 62 .

EE

6 提取 RNA

6.2.1 细胞 培养 优点

@ 细胞 情况 暴露 面积 样品 暴露 面积 结果 容易 完全 裂解。 相反 特别 难以 破碎 另外 WH RNA,

@ 永久 细胞 培养 细胞 低廉

@ 根据 需要 培养 繁殖 细胞 动物 尤其 采集 样品 进行 活体 检测 几乎 同一 标本

® 培养 细胞 RNA RNA 容易

© 通常 破碎 样品 方法 相当 激烈 Polytron 破碎 影响 RNA 稳定

© 破碎 样品 通常 破坏 细胞 细胞 常会 产生 RNA、 DNA、 线 /或 叶绿体 DNA。 RNA 使 除去

© 培养 取出 培养 细胞 容易 彼此 细胞 同类 细胞 细胞 基质 紧密 联系 破碎 基质 形成 坚硬 碎片 操作 清除 碎片 使 RNA 达到 使 这些 步骤 没有 技术 难度 操作 增加 样品

@ 培养 细胞 属于 同一 细胞 相反 使 包含 细胞 使 确定 观测 基因 表达 调节 细胞

6.2.2 样品 优点

@ 维持 结构 制冷 切片 薄片 杂交 检测 基因 表达 方法 激光 捕获 技术 〈Eend , 1999; Kuecker %, 1999; Suarez-Quian ,1999) 取出 非常 少量 特异 细胞 B RNA,

:无论 正常 突变 理学 没有

@ 相对 (100mg AA) AW ABH eA RNA, WES.

重量 样品 细胞 ) BORK RNA.

© 速冻 80C 延长 保存 样品 RNA 稳定 粉末 备用 RNA 组织 裂解 融化 RNA,

研究 样品 RNA 错误 使 那些 培养 细胞 RNA 容易 错误 样品 超过 裂解 容量 获得 RNA 纯度 产量 降低 裂解 体积 操作 难度 同时 同样 数量 。63 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

介绍 基本 方法 方法 合适 取决 破坏 难度 缺乏 细胞 动物 细胞 植物 容易 裂解 遵循 规则 : 使 温和 方法 原则 增加 细胞 裂解 接触 表面 使 裂解 充分 裂解 细胞 研究 破碎 单个 细胞 增加 损伤 RNA 危险 利于 RNA

6.3.1 Polytron 破碎

Polytron 设备 。Polytron 驱动 设备 注册 商标 (Kinematica; Brinkmann 公司 销售 ) 设备 快速 体积 植物 细菌 培养 装置 ”。 转速 控制 程度 限度 减少 热量 重要 遵照 厂家 推荐 安全 方案 进行 操作 任何 错误 操作 意外 导致 严重 永久 公司 Omni 国际 公司 (Warrenton, VA) th

提供 驱动 装置 6.1 驱动 取代 EDK AM. ERA 尽管 耐用

末端 减少 “” 20 世纪 90 Omni 国际 公司 6.1)

同样 清洗 ”推出 样品

Teens TE ee 需要 清洁 探头 除了 样品 交叉

ra Cantina 污染 控制 RNase 利于 RNA

x: ak ae 稳定 广泛 使 使 降低 传染 媒介 扩散 潜在 危险

6.3.2

玻璃 试管 6.2)。 才能 使 生物 材料 进入 玻璃 特征 设计 使 操作 旋转 操作 使 液体 狭小 空间 管内 破碎 ) 破碎 细胞 /或 需要 昂贵 设备 破碎 i eee 设备 便宜 细胞 6.? .这 细胞 理想 工具 那些 剧烈 ”有 适用 达到 资料 正文 。Bellco Glass 公司 提供

64

6 提取 RNA

6.4 RNA 方法

没有 傻瓜 方法 样品 RNA。 RNA 方法 适宜 重量 状态 植物 ) 考虑 重要 因素 样品 RNA RNA 稳定 必须 考虑 关键 因素

RNA 遵循 指导 原则 RNA, 彻底 破碎 热情 实验 破碎 ) 损伤 RNA 品质 产量 短期 破碎 当然 短期 破碎 破碎 增加 接触 裂解 表面 RNA 印迹 、RT-PCR 相关 裂解 室温 放置 损伤 分离 RNA 品质 产量 9。

首次 进行 RNA 错误 重量 报道 提供 商业 试剂 公司 介绍 方法 100 1000mg RNA。 相应 试剂 适当 放大 获得 RNA 产量 裂解 液体 液体 管子 操作 增加 离心 使 实验 极其 便 利于 裂解 缓冲 作用 使 软组织 常常 使 广泛 动力 驱动 CAN Omni)

通常 RNA 特有 获得 RNACRNA 产量 取决 重量 )。 需要 500 1000pl 溶解 RNA。 研究 培养 细胞 RNA 体积 RNA 使 含有 寻常 细胞 ,产生 RNA。 RNA 溶解 充分 6. 3), RNA 需要 缓冲 情况 进行 操作 值得 少量 溶液 进行 适量 28S 18S 核糖 RNA (rRNA) 变性 电泳 清晰 10 )。 确定 稀释 浓度 RNA 母液 进行 适当 稀释 获得 需要 RNA 浓度 乙醇 沉淀 形式 储存 80YC RNA 培养 细胞 RNA 复杂 进行 操作 采用 8 介绍 质量 控制 方法

6.4.1

必须 认识 取出 样品 ,RNase 保持 降解 RNA 活性 适合 RNA 活性 保持 使 死亡 环境 利于 RNase 复活 ,RNase 恢复 活性 状态 迅速 破碎 RNase, 获得 样品 马上 冰冷 磷酸 缓冲 生理 盐水 (PBS) 漂洗

© 实验 样品 悬浮 缓冲 储存 80C 实验 浆液 融化 质量 RNA。 方法 数组 获得 质量 RNA。 方法 受到 操作 因素 影响 方法 没有 统一 规则 e 65

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

6.3 充分 溶解 RNA 1 8: RNA 沉淀 沉淀 5000p] AR, Ze 60 温浴 10min, 放置 2h。 10 介绍 方法 RNA PE DR AS PRE Be Hak. 提取 RNA 产量 ,500J 溶液 足以 完全 溶解 RNA, 准确 测定 RNA WE. MRNA 母液 取出 少量 溶液 进行 适当 稀释 直至 28S 18S 核糖 RNACrRNA) 变性 清晰 .9~10: 适当 溶解 RNA 样品 11: RNA 标准 标准 (Promega)

RNase 污染 解剖 刀片 迅速 重复 使 解剖 刀片 明智 重复 使 采用 那些 使 历史 清楚 解剖 刀片 引入 RNase 危险 转移 裂解 缓冲 尽量 避免 PBS 溶液 引入 裂解 缓冲 稀释 破碎 结构 丧失 裂解 缓冲 抑制 RNase AY HE I WSR

6.4.2 冷冻

马上 样品 RNA, 样品 冷冻 备用 样品 马上 组织 快速 冷冻 898, 然后 80 C 干冰 保存 备用 品质 RNA RNA 存在 困难 粉碎 缓冲 体积 足够 适量 裂解 缓冲 融化 破碎 然而 切片 检测 杂交 0.T. C。 @ 低温 冷冻 进行 切片 效果 快速 冷冻 进行 切片 效果 RNA 空间 维持 开展 杂交 必需 快速 冷冻 常常 破坏 RNA 空间 快速 冷冻 切片 进行 杂交 结果 RNA 空间 数据 :

反复 损伤 RNA 稳定 情况 使 切割 非常 困难 作者 实验 体积 体积 快速 冷冻 (0.5~2g), 封口 80C 保存 提取 RNA 样品 超低温 冰箱 取出 实验 8。 操作 粉碎 迅速 冷冻 碎片 转移 干冰 样品 融化 生物 材料 重量 严重 错误 冰冻 裂解

@ 快速 冷冻 “突然 冷冻 ”(snap-freezing)

@ 0.T.C. Tissue-Tek O. TI. C. 低温 恒温 制备 切片 样品 。0O. T. C. 冷冻 适当 冷冻 保持 低温 刀片 《一 22C), 样品 O. T.C. 介质 逐步 冷却

@ 根据 操作 眼镜 穿 工作 保证 实验 操作 样本 病原 体感 适当 隔离 进行 操作 警告 适宜 样品

。66

6 提取 RNA

裂解 缓冲 冰冻 裂解 缓冲 迅速 融化 破坏 迅速

6.4.3 固定

10%% 4% 溶液 固定 保存 样品 常见 使 RNA 回收 困难 试剂 实用 蛋白酶 方法 溶解 方法 〈Stanta Schneider, 1991; Masuda ,1991)。 RNA Al DNA 回收 〈Coombs ,1999) 固定 甲醇 (—CH2OH) (—CH2OH) ,RNA PCR TE 缓冲 70C 1h, 除去 RNA 〈Masuda ,1999), 改进 RNA 近期 cDNA 合成 方法 PCR 引物 设计 策略 改进 固定 RNA 作为 模板 RT-PCR 灵敏 (Mikhitarian ,2004) RNA 作为 模板 固定 RNA 作为 模板 合成 cDNA 比较 冷冻 RNA 固定 RNA

6.5 GRAS: 氢化 -尿素 RNA

方法 Auffray Rougeon (1980), Kato (1987) 方法 进行 方法 |

AE. APA. Bg 97) A. SEE ADA 2) RNA, XPATH MD MW KE EAA RY la] A. BE 60s 完成 样品 裂解 缓冲 试管 浸没 6.4)。 早期 包括 样品 蛋白 K 温浴 又, 现在 除了 氧化 -尿素 RNA,

ene RN AE tk ee 6.4 采用 氧化 -尿素 CD) 预先 : 实验 缓冲 试管 必须 样品 氧化 -尿素 4C 核酸 活性 LPR AS a etic Oe J 干冰 放置 使 避免 产生 热量 正文 融化 精确 Q 适当 重量 转移 50ml HE 超过 60s。 间隙 10 体积 氧化 (3mol/L A

; 6mol/L 尿素 ; 50mmol/L Tris, pH 7.4; lmmol/L EDTA; 100mmol/L Bit FE Z BE; 0.05% N-+ be SE WLR) 注意 ”8 使 @ ,用 Polytron 使 脉冲 超过 60s。 注意 1 尽量 避免 </ 65

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

注意 2 ”使 电动 驱动 操作 必须 遵照 安全 事项

® 转移 15ml 溶液 体积 超过 12ml) 试管 20C

@) 早晨 浆液 管子 离心 转子 5000Xg 45C 75min,

注意 ”确认 离心 转速 离心 兼容

© 离心 Kimwipe 离心 溶液 固化 液体 离心 管内 棉签 清除 Kimwipe 试管 清理 干净。 进行 操作

@ 8 10ml 4 AY 3mol/L AEE. ARE 30s。

注意 程度 足以 沉淀 物质

样品 5000Xg 4C 45min。

注意 确认 离心 转速 离心 兼容

@ BRERO~®.

O Bitte RMR F 2.5ml TE 缓冲 SDS 缓冲 [10mmol/L Tris(pH 7.5), 0.lmmol/L EDTA, 0.5% SDS] 悬浮 沉淀 必要

@ 150p1 5mol/L NaCl, Wa ALARA.

QO @@ 材料 15ml RAMBRE , MASAI: 氯仿 : )。 @@ 材料 15ml, 丙烯 塑料 溶剂 离心 样品

注意 ”修改 : Ati: 混合 体积 Tris-SDS 缓冲 (100mmol/L NaCl; Immol/L EDTA; 10mmol/L Tris, pH 8.5; 0.5%SDS) 饱和 苯酚 氯仿 : (24:1) 体积 Tris 饱和 SHEER EARKEH 0.1% 饱和 操作 步骤 5. 2 附录 3。

® ¥F 4°CW 1000X g BL Feta 10min, |

@ BR KEKABARHN RABAT. DORBSARARAHHAR.

GD) 体积 : 氯仿 : SOE, Zo Te RE i

4C 1000Xg 离心 样品 10min,

@ 转移 蛋白 界面 转移

注意 如果 蛋白质 操作 界面 消失

体积 氯仿 氯仿 : (24 : 1) 4C 1000Xg BDH 3min

© RNase Corexe@ 玻璃 3 体积 100% Parafilm 玻璃 乙醇 混合 温和

OO 玻璃 强度 离心 Corex 玻璃 Kimble-Kontes 公司 购买 同等 质量 。15ml 玻璃 45500-15,30ml 玻璃 45500-30。 Corex 玻璃 Kimble 强度 适当 橡皮 才能 离心 . 68 e

6 提取 RNA

倒置 玻璃 混合 溶液

O 玻璃 20C 回收 RNA,

QD 玻璃 合适 橡皮 离心 转子 4C 9000Xg 30min,

@ 离心 结束 丢失 管内 沉淀

@ FA 75% Zi: 25%% RNase 洗涤 RNA 沉淀 5ml 75% ZB: 25% FE RNase 洗涤 15ml Corex RH BULA) RNA; 10ml75% : 25% FG RNAse 洗涤 30ml Corex 3&8 Bite Wy RNA,

i Aly We Corex HIE. F 4°CL 9000 X g 离心 15min,

BRFRO~GRK, BIEVER 3

@ 5ml 乙醇 洗涤 RNA 4C 9000xg 离心 10min。

注意 ”用 乙醇 洗涤 RNA 干燥 RNA 限度 避免 乙醇 污染 获得 it RNA 利于 研究

@ 空气 干燥 玻璃 管内 RNA 沉淀 当心 RNA 沉淀 干燥 乙醇 清洗 RNA 沉淀 空气 干燥 5min。 玻璃 倒置 37C 2 3min, 干燥 : 玻璃 必须 敞开 才能 残余 乙醇 干净 培养 放置 3 4 Kimwipes 滤纸 玻璃 玻璃 开口 培养 金属 直接 接触

@ 体积 TE 缓冲 (10mmol/L Tris, pH 7.5; 0. 1mmol/L EDTA) 悬浮 RNA。 样品 初始 重量 RNA 需要 500~ 1000p] 体积 溶液

1lulRNA 测定 RNA 溶液 浓度 8 )。 适量 RNA 溶液 变性 琼脂 RNA oe (第 10 )。

注意 AMER PHAM. HW RNA 没有 完全 溶解 (A 6.3).

RNA 80C。RNA 样品 溶液 形式 保存 乙醇 沉淀 形式 保存

6.6 实验 : RNA

脂肪 RNA 使 缓冲 破坏 生物 结构 容易 RNA。 方法 RNA 麻烦 事情 除去 脂肪 ) WAKA. wa. FORA WM ERS mR -尿素 缓冲 ) 细胞 简单 低速 离心 使 脂肪 漂浮 离心 脂肪 重复 低速 离心 除去 脂肪 操作 方法 直接 氯仿 裂解 ,, 脂肪 除去 脂肪 RNA 普通 RNA 操作 酸性 : 氯仿 纯化 RNA。 方法 〈Chomczynski Sacchi 改进 1987) 宣称 自制 试剂 RNA, 厂家 提供 试剂 TRIzol TRI RNA 信心

OD !

@ 超过 100 mg)。 100 mg lml 溶液 D

69 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

[4mol/L fi URAL; 25mmol/L 柠檬 ,pH 7.0; 0.5% N-+ —%ESENLA BA; 100mmol/L 2-Fi CR CHART FEO) |. FEU ROR. MAS ARATE. fA op Bs a A 仿 ) 体积 仿 氯仿

@ @ 毫升 溶液 D 0. Iml 2mol/L 柠檬 (pH 5.2),1.0ml ) ,0. 2ml A: FRB 〈49 : 1) 试剂 塑料 然后 溶液 试剂 剧烈 倒置 30s。

® 放置 15min, 样品 冷却

© 离心 微型 离心 4C 12000Xg 离心

© 含有 RNA 离心 0. 75 体积 冰冷 20C 1h RNA。

注意 ”制备 规模 Corex 玻璃 沉淀 回收 RNA 正确 橡皮 Corex RRS. Bebe Mee RNA,

@ ¥F 4°CVA 9000 X g Baty 10min, KE RNA Pte. J OMAAE EAM.

当心 ”在 操作 心力 超过 离心 离心

300u] 溶液 D〈 步骤 ) 彻底 溶解 RNA ite. AH RNA 溶液 转移 RNase 污染 1. 7ml 微型 离心

@ 0. 75 体积 RNA, 20C 1h 沉淀 RNA.

@ 4C 离心 速度 离心 10min, RNA 沉淀 倾斜

@ RNA 沉淀 70 乙醇 3 4 次, 500k1。 洗涤 RNA 沉淀 没有 离心 RNA 沉淀 空气 干燥 使 乙醇 挥发 95 乙醇 干燥

@ FA TE 缓冲 DEPC 重新 RNA, 尽量 65C 10 min RNA 溶解 RNA TERA WIE TR, MED BE 65C 乙醇 沉淀 形式 保存 RNA 备用 RNA 浓度 RNA 溶液 80C RNA 样品 反复

6.7 纯化 核糖 mRNA

尽管 mRNA 检测 基因 表达 优秀 指标 必须 开展 方面 检测 才能 充分 细胞 基因 表达 生物 RNA 技术 使 PCR 结合 揭示 细胞 裂解 RNA 含量 反映 mRNA 翻译

清楚 方面 确定 基因 表达 调控 进入 翻译 [ 核糖 核糖 )] mRNA 相对 精确 反映 基因 表达 进行 翻译 et i PA ob eS KR RK AY mRNA, 翻译 研究 基因 表达

细胞 核糖 mRNA 确定 mRNA 翻译 mRNA 翻译 效率

20 世纪 70 免疫 特异 沉淀 核糖 报道 〈Palacios ,1972; Schlechter, 1973; Palmiter,1974)。 技术 改进 核糖 免疫 沉淀 〈Schultz ,1977) 利用 方法 核糖 结合 mRNA 研究

* 了。

C—O

6 提取 RNA

显著 例子 利用 特异 抗体 编码 白细胞 抗原 (HLA)-DR 溶性 抗原 mRNA (Shapiro Young, 1981; Korman ,1982)。 接着 血清 编码 合成 mRNA (Kraus Rosenberg, 1982) 肾脏 细胞 编码 mRNA (Russell ,1983)。 免疫 抗原 形式 正在 翻译 白质 抗体 免疫 沉淀 核糖 实例

现在 基本 实验 使 PCR 技术 喜欢 免疫 沉淀 特异 mRNA. 利用 数据 设计 PCR 非特 异性 标准 方法 核糖 捕获 正在 翻译 mRNA, 然后 除去 核糖 翻译 辅助 因子 核糖 mRNA, 转录 合成 制备 芯片 CGR 23 ), 基因 特异 引物 PCR 进行 检测 通用 引物 构建 CDNA 文库

6.7.1 实验 方案 : RA SABAH mRNA 提取

OMFS! 整个 操作 必须 遵循 RNase HERA.

@a 样品 : 样品 原始 质量 肯定 取决 利用 样品 使 10pl 缓冲 (25mmol/L NaCl; 5mmol/L MgCl; 25mmol/L Tris, pH7.5; 2.0% Triton X; lmg/ml 肝素 ) 合适 松弛 进行 @ 操作

Qb 培养 细胞 : 常规 方法 收集 细胞 附录 10) 重要 操作 冰冷 PBS 缓冲 洗涤 培养 细胞 使 细胞 培养 抑制 蛋白酶 活性 105 细胞 10nml AY 2 AR BE th YR 25mmol/L NaCl; 5mmol/L MgCl ,25mmol/L Tris, pH7.5; 2.0% Triton X; lmg/ml 肝素 ), 离心 4C

注意 4 浓度 200U/ml RNasin 替代 肝素 抑制 RNase 活性

注意 2 整个 维持 核糖 整体 收集 细胞 15min 100kg/ml, mRNA 捕获 核糖 解体

@ 转移 合适 RNase 活性 离心 液体 转移 Corex 玻璃 离心 Corex 玻璃 合适 橡皮 液体 RNase 污染 微型 离心 体积 体积 转子 4°C 9000 X g 离心 Smin,

© 离心 样品 50ml

@ 离心 心地 离心 浆液 原始 体积 离心 便 试剂

© 1.2 体积 缓冲 (25mmol/L NaCl; 200mmol/L MgCl; 25mmol/L Tris, pH7.5; 2.0% Triton X; lmg/ml 肝素 200U/ml RNasin). PK 2h。

© 15ml 硅烷 Corex 玻璃 3.5ml BRYA pK (25mmol/L NaCl; 200mmol/L MsgClz;, 25mmol/L Tris, pH7.5; lmol/L fe ##), Ja tn ABO KIRA RW 10ml。

注意 硅烷 方法 附录 8。

@) 离心 转子 4C 9000Xg 离心 15min。

oon).

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

@ 丢失 核糖

@ 1ml HEPES-SDS 缓冲 (0. lmol/L NaAc; 10mmol/L HEPES, pH7.5; 0.5% SDS) 重新 悬浮 核糖 增加 缓冲 液体 溶解 核糖

@ @ 核糖 超过 1ml1, 溶液 转移 2.2ml 微型 离心 核糖 体积 超过 1ml, 溶液 转移 2 2. 2ml 微型 离心

体积 : 氯仿 : (25 : 24 : 1) 混合 10000 X g 离心 5min 使 溶液

注意 ”如 使 离心 超过 离心 离心

QO 离心

@ 离心 体积 氯仿 氯仿 : HAR (24:1) 进行 4C 10000Xrfg 离心 1Imin, 使 溶液

© 9000X g 离心 体积 离心 硅烷 Corex 玻璃 @@ 操作 液体 相同 样品 混合

0. 08 3mol/L NaAc(pH5. 2) 2 体积 100%% 20 放置 2h RNA。 限度 回收 RNA,, 溶液 20C wk.

@ ¥F 4°CVW 9000 X g Bay 20min, WE RNA,

心地 乙醇 管内 RNA 沉淀

@ FA 75% ZR (100% 乙醇 DEPC 稀释 ) 洗涤 RNA 沉淀 2

@ 100%% 洗涤 RNA 沉淀 RNA 沉淀 空气 干燥 RNA 沉淀 彻底 干燥

@ RNA 溶解 体积 RNA 溶解 必要 65C 2min RNA 溶解 温和

@ 液体 4C 12000Xg 离心 15min。 使 Corex 玻璃 4C 9000Xg 离心 30min, ;

含有 纯化 RNA 管子 8 介绍 方法 检测 RNA 溶液 含量 纯度 RNA 溶液 80C 保存。

6.8 实地 采集 生物 样品

RNAlater (Ambion) 非常 重要 样品 保存 方式 革命 进步 使 保存 样品 任何 进行 RNA 产品 特殊 溶液 RNA 研究 工作 知道 阻止 生物 RNA 降解 生物 RNA 保存 研究 方便 生物 材料 质量 RNA。RNAlater 特征 利于 生物 样品 采集 野外 工作 场所 采集 样品 生物 材料 快速 冷冻 运输 即使 现实 研究 野外 工作 情况 快速 冷冻 生物 样品 现实

*。 72

6 提取 RNA

6.9 RNA“ ”万

固定 RNA, RNA 含有 少量 蛋白 作为 污染 RNA 产生 负面 影响 RNA 纯度 DNA 杂交 实验 效果 进行 RNA“ >。RNA 净化 方式 溶解 RNA TE 缓冲 液体 5 介绍 方法 体积 : 氯仿 : OBR (25: 24: 1) RNA 溶剂 混合 体积 控制 1. 5ml 明智 操作 1500 微型 离心 白色 RNA 溶液 蛋白质 污染 体积 : A 仿 : SM 〈25 : 24 : 1) 白色 蛋白质 ) 体积 氯仿 氯仿 : HAR (24:1) 残余 苯酚 氧化 沉淀 RNA, RNA 质量

另外 RNA 净化 柱子 硅胶 RNA 结合 试剂 供应 商都 提供 柱子 RNA ; 然后 缓冲 纯化 RNA 作为 方法 速度 任何 溶剂

RNA“ ”也 意味 除去 RNA 溶液 基因 DNA 线粒体 DNA 污染 RNA 剧烈 破坏 方式 DNA 释放 5 介绍 实验 DNase | MAA BH RNA 溶液 消除 RNA 溶液 DNA 污染 担心 PCR 基因 DNA cDNA 担心 印迹 污染 DNA 产生

认识 RNA 例子 AAW RS RNA 脂肪 RNA 情况 3 体积 4mol/L 乙酸 LpH 7.0 (不 5.2)], 20C RNA, 原则 滞留 溶液 〈Sambrook ,1989) 离心 4C 8000Xg 离心 15min 收集 RNA, Ab, Hf 4mol/ 氧化 含有 沉淀 RNA 根据 离心 3000Xg 5000Xg 离心 10min 收集 RNA, th ABBR RNA WRB (Puissant Houdebine,1990) 情况 详细 介绍 方法

: 留心 RNA 操作 细节 获得 质量 RNA。 减少 操作 偶尔 引入 RNase 风险 RNA 稳定 进行 RNA 明智

6.10 参考 文献

Auffray, C., and Rougeon, F. (1980). Purification of mouse immunoglobulin heavy-chain messenger RNAs from total myeloma tumor RNA. Eur. J. Biochem. 107, 303.

Chomcezynski, P., and Sacchi, N. (1987). Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Analytical Biochem. 162, 156.

° 7.

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Coombs, N. J., Gough, A. C., and Primrose, J. N. (1999). Optimization of RNA and RNA extraction from archival formalin-fixed tissue. Nucleic Acids Res. 27, e12.

Fend, FE, Emmert-Buck, M. R., Chuaqui, R., Cole, K., Lee, J., Liotta, L. A., and Raffeld, M. (1999). Immuno-LCM: Laser capture microdissection of immunostained frozen sections for mRNA analysis. Am. J. Pathol. 154, 61.

Kato, N., Pfeifer-Ohlsson, S., Kato, M., Larsson, E., Rydnert, J., Ohlsson, R., and Cohen, M. (1987). Tissue-specific expression of human provirus ERV3 mRNA in human pla- centa: Two of the three ERV3 mRNAs contain human cellular sequences. J. Virol. 61, 2182.

Korman, A. J., Knudsen, P. J., Kaufman, J. F, and Strominger, J. L. (1982). cDNA clones for the heavy chain of HLA-DR antigen obtained after immunopurification of polysomes by monoclonal antibody. Proc. Natl. Acad. Sci. 70, 1844.

Kraus, J. P., and Rosenberg, L. E. (1982). Purification of low-abundance messengers RNAs from rat liver by polysome immunoadsorption. Proc. Natl. Acad. Sci. 79, 4015.

Kuecker, S. J., Jin, L., Kulig, E., Oudraogo, G. L., Roche, P. C., and Lloyd, R. V. (1999). Analysis of PRL, PRL-R, TGF -R11 gene expression in normal and neoplastic breast tissues after laser capture microdissection. Appl. Immunohistochem. Mol. Morphol. 7(3), 193.

Masuda, N., Ohnishi, T., Kawamoto, S., Monden, M., and Okubo, K. (1999). Analysis of chemical modification of RNA from formalin-fixed samples and optimization of molecular biology applications for such samples. Nucleic Acids Res. 27, 4436.

Mikhitarian, K., Reott, S., Hoover, L., Allen, A., Cole, D. J., Gillanders, W. E., and Mitas, M. (2004). Enhanced detection of RNA from paraffin-embedded tissue using a panel of truncated gene-specific primers for reverse transcription. BioTechniques 36, 474.

Palacios, R., Palmiter, R. D., and Schimke, R. T. (1972). Identification and isolation of ovalbumin-synthesizing polysomes. I. Specific binding of '*I-anti-ovalbumin to polysomes. J. Biol. Chem. 247, 2316.

Palmiter, R. D. (1974). Magnesium precipitation of ribonucleoprotein complexes. Expedient techniques for the isolation of undegraded polysomes and messenger ribonucleic acid. Biochemistry 13, 3606.

Puissant, C., and Houdebine, L. (1990). An improvement of the single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. BioTechniques 8, 148.

Russell, D. W., Yamamoto, T., Schneider, W. J., Slaughter, C. J, Brown, M. S., and Goldstein, J. L. (1983). cDNA cloning of the bovine low density lipoprotein receptor: Feedback regulation of a receptor mRNA. Proc. Natl. Acad. Sci. 80, 7501.

Sambrook, J., Fritsch, E. FE, and Maniatis, T. (1989) “Molecular Cloning: A Laboratory Manual,” 2nd ed, p. 7.22. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.

Schechter, I. (1973). Biologically and chemically pure mRNA coding for a mouse immunoglobulin L-chain prepared with the aid of antibodies and immobilized olig- othymidine. Proc. Natl. Acad. Sci. 70, 2256.

Schultz, G., Kieval, S., Groner, B., Sippel, A. E., Kurtz, D. T., and Feigelson, P. (1977). Isolation of specific messenger RNA by adsorption of polysomes to matrix-bound antibody. Nucleic Acids Res. 4, 71.

Shapiro, S. Z., and Young, J. R. (1981). An immunochemica! method for mRNA purifica- tion. Application to messenger RNA encoding trypanosome variable surface antigen. J. Biol. Chem. 256, 1495.

Stanta, G., and Schneider, C. (1991). RNA extracted from paraffin-embedded human tis-

° 74.

EEE —_—

6 提取 RNA

sues is amenable to analysis by PCR amplification. Bio Techniques 11, 304.

Suarez-Quian, C. A., Goldstein, S. R., Pohida, T., Smith, P D., Peterson, J. I., Wellner, E., Ghany, M., and Bonner, R. F. (1999). Laser capture microdissection of single cells from complex tissues. Bio Techniques 26, 328.

(eH LA; SH FR)

- 75°

f7S =RRSE RNA

7.1 £44 8

什么 纯化 信使 RNA (mRNA)? 充分 回答 问题 转录 产物 数量 统计 考虑 RNA 平均 拷贝 mRNA mRNA、 mRNA mRNA,

mRNA 细胞 拷贝 mRNA。 细胞 执行 特定 功能 产生 特定 蛋白 理由 推定 细胞 转录 相应 信使 RNA8@。 细胞 输卵管 细胞 别克 B- 蛋白 (Efstratiadis 1976) (Buell ,1978) mRNA 细胞 含有 拷贝 mRNA。 标准 基因 (lM, ABA. PALABA. GAPDH) mRNA 属于 mRNA, 作为 RNA 参照 mRNA 细胞 14 拷贝 拷贝 mRNA (Williams,1981), 稀有 mRNA。 超级 灵敏 检测 技术 聚合 (PCR), 促进 mRNA 检测 302%% 细胞 mRNA 属于 mRNA。 那些 1 拷贝 /细胞 mRNA 定义 非常 mRNA, 意味 必须 混合 细胞 才能 检测 mRNA。

纯化 mRNA 目的 增加 生物 样品 mRNA 统计 代表

纯化 策略 RNA 样品 包括 细胞 裂解 材料 便 积累 细胞 基因 转录 产物 ; 纯化 RNA 样品 进行 适当 特定 RNA 目的 样品 进行 利于 mRNA 研究 原因 ): Ow T Northern 、S1 核酸 核糖 核酸 保护 特定 基因 转录 产物 检测 必需 RNA 增加 检测 灵敏 ,@ 利于 mRNA 转化 互补 DNA (cDNA)@8。 统计 意义 代表 提高 那些 mRNA 印迹 检测 CRT-RNA) 功率 必须 清楚 使 试剂 技术 试验 纯化 mRNA (而 采用 RNA), 希望 采用 纯化 mRNA.

@@ 注意 mRNA 转录 产物 属于 细胞 RNA, DORE RRR RNA (rRNA) 转移 RNA (tRNA). @@ mRNA 拷贝 基因 基因 重复 ) 转录 产物 细胞 需要 基因 产物 采用 策略 @ cDNA 合成 传统 文库 构建 、PCR 定量 转录 产物 相关 目的 . 76 *

SL ——

7 RNA

7.2 BRRBHE

知道 poly(A) 尾巴 。RNA poly(A) 尾巴 ) mRNA 3 末端 poly(A 尾巴 酸化 poly(A) 尾巴 添加 mRNA 3 ' 末端。 酸化 转录 终止 直接 (Dar- nell, 1979; Maney,1988), 细胞 〈Moore Sharp, 1985) 催化 统称 polyC(A) 聚合 酸化 转录 转录 调节 事件 速度 (Nevins Darnell, 1978).

poly(A) 尾巴 使 相同 基因 转录 合成 RNA poly(A) 尾巴 相同 poly(A) 尾巴 50~300 变化 典型 poly(A) 尾巴 200~250 RHR. BK. WA poly(A) 尾巴 RNA 统称 poly(A)+mRNA, mRNA HAAR MRL. RE poly(A) 尾巴 准确 功能 认为 poly(A) 尾巴 : 促进 mRNA 细胞 运输 ); Oia mRNA 细胞 稳定 功能 (综述 Ross,1995) 细胞 mRNA 翻译 场所 观察 资料 支持 假设 poly(A) 尾巴 功能 : 抑制 RNA 酸化 3'-Hi ABR EF (cordycepin) 降低 转录 酸化 序列 细胞 ; @mRNA 半衰期 根据 poly(A) 尾巴 预测 体内 ,poly(A) 特征 poly (A) 结合 蛋白 (PABP) 密切 相关 10 20 poly(A) 尾巴 定量 结合 PABP Kramer,1996), 细胞 细胞 观察 定量 结合 。po- ly(A) 尾巴 PABP 相互 作用 利于 mRNA 抵抗 3 5 核酸 攻击 RNA 使 PABP 蛋白 结合 RNA

3'-poly(A) 尾巴 产生 实际 活性 连续 作用 结果 RNAChnRNA) 裂解 进行 酸化 清楚 RNA 转录 产物 除了 信和 (Nevins Darnell, 1978; Ziff,1980)。 RNA 核酸 3 末端 逐步 降解 核酸 消化 形成 poly(A) 尾巴 添加 精确 (Nevins Darnell,1978) 添加 形成 poly(A) 尾巴

酸化 进行 剪接 偶然 事件 效率 剪接 酸化 信和 精确 调控 酸化 mRNA 6 模块 5 …AAUAAA…3' 模块 密切 相关 变异 序列 模块 酸化 30 (Proudfoot Brownlee,1976)。 剪接 酸化 需要 GU HE (Gil Proudfoot, 1984; McDevitt ,1984; Sadofsky Alwine, 1984; Cole Stacy, 1985; Conway Wickens, 1985)。 GU 序列 AAUAAA 模块 保守 10 40 酸化 通过 核酸 GU 丰富 poly(A) 聚合 构成 形成 完成 〈Takagaki ,1988)

7.3 poly(A) 解释

重要 针对 poly(A) 尾巴 mRNA。 mRNA 酸化 mRNA 没有 酸化 Jy -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

poly(A)” mRNA 酸化 mRNA 特定 相关 研究 意义

实例 1: Northern poly(A)* mRNA 定性 定量 测定 细胞 细胞 poly CA) mRNA 蛋白 mRNA)。 转录 产物 选择 转录 酸化 酸化 转录 产物 情况 复杂

读者 当心 通过 poly(A) 尾巴 筛选 “总 mRNA” 试剂 产生 poly (A) mRNA。 poly(A) 尾巴 细胞 添加 疑问 整个 细胞 裂解 poly(A)* mRNA 包括 酸化 细胞 RNACmRNA) 酸化 细胞 RNA(ChnRNA)。 RNA 混合 作为 功能 mRNA 翻译 ) 代表 hnRNA 细胞 mRNA, 降解 注意 集中 细胞 产生 poly(A) mRNA, NP-40 缓冲 5 ) 完整 细胞 细胞 酸化 RNA。 确定 那些 翻译 mRNA, 制备 mRNA 核糖 6 ), 乙酸 (EDTA) RNA, EDTA fEBRBA Mg:+* 核糖 单个 释放 正在 翻译 RNA (Aziz Munro, 1986; Meyuhas ,1987; 综述 Pierandrei-Amaldi Amaldi,1994) 方法 策略 (Meyuhas ,1996) 活性 mRNA 识别 非常

实例 2: 合成 cDNA cDNA 构建 文库 poly(A)+ mRNA 离开 mRNA 转化 cDNA ,oligo(dT) 引物 poly(A) * mRNA 模板 退火 合适 方向 提供 3'" -OH 引物 聚合 活性 @ cDNA 方法 结果 mRNA 3' 合成 cDNA。 意识 通过 方式 制备 CDNA 文库 包括 相应 poly(A) ~ mRNA 克隆 克服 oligo(dT) 引物 合成 cDNA 文库 潜在 缺点 文库 采用 随机 引物 合成 cDNA 同一 反应 同时 随机 引物 oligo (dT) 合成 cDNA 方法 现在 作者 实验 转录 合成 cDNA 标准 操作 序列 随机 RNA 退火 退 产生 引物 3 -OH, 3'-OH 同时 引导 进行 DNA BE 引物 RNA 3 末端 poly(A)+ 尾巴 影响 oligo(dT) 引物 方式 合成 CDNA 没有 poly(A) 尾巴 相应 序列 常用 引物 合成 序列 cDNA, 利于 现代 方法 mR- NA。 构建 文库 进行 筛选 文库 构建 采用 cDNA 合成 引物 实验 结果 解释 9。

poly(A)- RNA 优点 缺点 7.1)。 须根 灵敏 获得 细胞 数量 重量 利弊 采用 poly(A) * RNA RNA。 情况 细胞 RNA 确定 纯化 poly (A)+ mRNA,

@ 依赖 RNA M DNAKAAR. HACER 18 重点 讨论 @ 极端 例子 CDNA 合成 poly(A) 聚合 RNA, 使 RNA 酸化 ! 操作 必需 推荐 * 78

7 SREB RNA

7.1 poly(A)+ 优点 缺点

优点

poly(A)+ 增加 mRNA RNA 比例 ;

poly(A)+ 限度 减少 rRNA tRNA 干扰 ; poly(A)+ 增加 检测 灵敏 ;

目前 poly(A) 捕获 方法 沉淀 样品 显著 浓缩 样品 ;

纯化 .poly(A)+ mRNA 直接 使

收集 沉淀 polyC(A)-RNA 作为 优秀 阴性 ,尤其 印迹 阴性

缺点

poly(A) poly(A)” mRNAs;

纯化 poly(A)+ RNA 损失 降低 稀有 mRNA 比例 ,尤其 RNA poly(A) * RNA; 裂解 方法 影响 ,分离 poly(A) + mRNA 含有 酸化 hnRNA;

oligo(dT) 昂贵 ;

即使 5 poly(A)+ mRNA 克隆 RT-PCR 改进 效果 ,但 poly(A) * mRNA 必需

tt: mRNA 信使 RNA; rRNA 核糖 RNA;RT-PCR ; tRNA 转移 RNA。

7.4 mRNA OSS

mRNA mRNA RNA 重量 微量 细胞 常常 采用 琼脂 电泳 密度 梯度 离心 ) 进行 mRNA 相反 极端 情况 生物 物理 研究 需要 材料 纯化 RNA。 达到 毫克 数量

ALY MASE RR PR te RNA 酸化 RNA, 利用 胸腺 自然 结合 细胞 RNA 细胞 RNA poly(A)+ mRNA。 基于 生物 活性 结构 进行 ) 生物 结构 poly(A) 尾巴 曾经 利用 oligo(CdT)- 纯化 poly(A)* mRNA, PPA ER ER i AR [oligo(CdT)] 5 -磷酸 纤维 (Aviv Leader,1972) ,poly(A) 尾巴 oligo(dT) 形成 使 poly(A)+ mRNA 保留 基质 使 oligo(CdT)- poly(A)+ mRNA 广 提供 结合 容量 纯化 oligo(CdT)- 许可 Gilham (1964) 当初 介绍 方法 合成 oligo(CdT)- 风险 oligoCdT)- 相当 poly(A)- mRNA,, 乐于 采用 介绍 方法 方法

虽然 poly(A) mRNA 改变 poly(A)+ mRNA 方法 仍然 方法 简化 繁琐 曾经 “过 oligo(dT) Cami Ait ) 操作 方法

D 直接 微型 离心 oligo(dT)- RNA 混合 需要 oligo(dT)- RNA,

G@ HAAS oligo(dT) 结合 磁铁 捕获 杂交 核酸

G@) 利用 生物 生物 : 生物 核酸 结合 改变 生物 活性 结合 Kd 10-5mol/L。 结合 使 生物 标记 oligo(dT) poly

79

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

(A)* mRNA 配对 形成 复合 回收 poly(A) mRNA。 体积 便 需要 进行 核酸 沉淀 利用 RNA 纯化 试剂 采用 方法 方法 进行 修改

RNA polyCU) 琼脂 促进 基质 RNA 样品 poly (A)* mRNA A : U AB.

采用 什么 方案 poly(A)* mRNA, 重要 操作 体积 使 样品 浓度

清楚 poly(A) mRNA 共同 离子 强度 缓冲 poly(A)’ mRNA 退 结合 消除 目标 RNA 基质 静电 必需 阳离子 抵消 负离子 阻止 配对 方式 poly(A)* mRNA,

离子 浓度 增加 ,oligo(CdT) 基质 结合 力也 提高 500mmol/L NaCl, KCl1 LiCD)@8。 同等 浓度 ,KC1 LiCl 促进 基质 结合 作用 NaCl 促进 作用 显著 (Mercer Naora,1975) 促进 基质 结合 RNA 增强 核酸 基质 非特 异性 杂交 浓度 缓冲 没有 杂交 poly(A)* RNA; 然后 非常 缓冲 杂交 poly (A) mRNA 回收 单价 阳离子 核酸 静电 RNA 基质 方式 poly(A) * RNA poly(A)” RNA 乙醇 进行 DL¥E. poly(A)” RNA 杂交 cDNA 合成 阴性 14 18 介绍 )

7.5 技术 纯化 poly(A)- RNA

复杂 混合 同化 宝贵 抗体 识别 结合 细胞 表面 抗原

回收 酸化 RNA。 公司 生产 产品 Dynabeads olido(dT) Dynal

公司 产品 (Dynal, Inc. , Lake Success, NY). Dynabeads 2.8ym, AAR 氧化 〈Fez O; ) 颗粒 磁场 颗粒 形成 磁极 5' ,25 脱氧 表面 离子 强度 RNA 混合 利于 酸化 RNA 连接 olido(dT) 引物 杂交 (图 7. 1) 力学 溶液 状态 游离 ,5min 完成 杂交 样品 靠近 杂交 poly(A)* RNA (图 7.2)。 标准 模式 提高 温度 离子 浓度 缓冲 捕获 酸化 RNA 需要 传统 使 核酸 技术 主要 优势 速度 浓度 完整 poly(A)+RNA。 方法 需要 重新 沉淀 浓缩 polyC(A)+RNA。 重新 沉淀 常常 进一步 损失 独特 poly(A)+ RNA。 平均 结合 容量 结合 2ug poly(A)* RNA. FARA KAMEN poly(A) * RNA 直接 cDNA

O 生产 包装 详细 介绍 许多 〈dT) 基质 。80 -

7 RNA

RNA

环境 J tD-YA |

TELTLEOEET LeT Z,AAAAAAAAAA RNAS’

I % poly(A) RNA == I 环境 3; AAAAAAAAAA RNAS’

poly(A)+mRNA

PCR

7.1 polyC(A)* RNA 技术 微型 离心 早先 纯化 RNA 整个 细胞 裂解 oligoCdT) 混合 poly(A) 尾巴 退 磁铁 酸化 mRNA 捕获 离心

WEA SEAR A Rte RNA 体积 非常 缓冲 纯化 mRNA 方法 任何 方法 RNA 兼容

文库 构建 保护 、RT_PCR 翻译 、RNA 印迹

介绍 Dynabeads RNA 操作 又。 生物 样品 材料 : 纯化 RNA (细胞 RNA);, 培养 生长 培养 固体 情况 生物 材料 重要 直接 细胞 裂解 直接 获得 poly 调控 全民 oOAG IO 脱氧 识别 捕获 具有 poly(A) 结构 mRNA hnRNA, 捕获 没有 poly(A) 结构 mRNA。 使 技术 关键 @ 进行 操作 必须 彻底 除去 离心 缓冲 ,@ 离心 才能 除去 液体

提醒 注意 采用 厂家 提供 poly(A)+ RNA 方法 基于 磁性 柱子 离心 产品 产品 针对 poly (A) 尾巴 进行

7.5.1 实验 方案 9: 纯化 poly(A)+ RNA

(1) RNA 47% poly(A)* RNA ® 75pg B RNA 预计 含有 1~4yg poly(A)* mRNA, #4 RNA 100pn1 AG

© 采用 Dynal 公司 资料 (Lake Success, NY). 。81

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

RNase TIE 缓冲 RNA 样品 浓度 75pg/100x1, 体积 2 勾结 缓冲 (mol/L LiCl; 20mmol/L Tris-Cl, pH7.5; 2mmol/L EDTA),

@ ££ 65°C HH RNA WH 2min,

注意 ”破坏 RNA 结构 使 poly(A 尾巴 容易 基质 进行 配对 改进 杂交 效果

@ 变性 储备 8” 取出 lmg Dynabeads oligo(dT)25 200pl) 转移 含有 RNase 微型 离心 离心 磁铁 。30s 离心 依然 磁铁 微型

100pl 2X 缓冲 含有 微型 离心 离心 磁铁 彻底 除去

@ 磁铁 取出 离心 微型 离心 100kl 2X 缓冲 NA 样品 结合 缓冲 稀释 结合

© RNA 悬浮 混合 室温 杂交 5min。 进行 mRNA 回收

(2) 直接 培养 细胞 boly(A)+RNA

D (105 107 足够 ) 冰冷 磷酸 (137mmol/L NaCl, 2.7mmol/L KCl, 4. 3mmol/L Naz HPO, « 7H20, 1.4mmol/L KH2PO,) YR. BAe 微型 离心 离心 〈200Xg) 沉淀 细胞

Q 沉淀 细胞 100pl 裂解 缓冲 (10mmol/L Tris-Cl, pH 7.5; 0. 14mol/L NaCl; 5mmol/L KCl; 1% TritonX-100 NP-40) 放置 lmin。 RNase 抑制 裂解 缓冲

注意 ”也 常用 RNA 裂解 缓冲 固体 polyCA)+ 采用 THR

@ 离心 样品 30s。

© 转移 微型 离心

© 储存 吸取 适当 体积 Dynabeads oligoCdT), RNase 微型 105 细胞 400pg 离心 磁铁 。30s 微型 离心 彻底 除去

© 100pl 2 结合 缓冲 含有 离心 离心 磁铁 情况 离心 彻底 除去

@O 磁铁 取出 离心 100ul 2 勾结 缓冲 (20mmol/L Tris-Cl, pH 7.5; Imol/L LiCl; 2mmol/L EDTA; 0.4%% 1%% 硫酸 ) 重新 悬浮 转移 含有 细胞 裂解 离心 (来源 )

温和 混合 室温 杂交 5min。 进行 mRNA 回收

(3) 直接 固体 poly(A)+ RNA

方法 利于 直接 poly(A)+RNA。 方法 植物

© 倒置 使 离心 管内 Dynabeads 储存 溶液 充分 悬浮 吸取 导致 oligo(dT) 脱落 降低 效用 82 -

7 RNA

boly(A)+RNA。

@ 冷冻 〈0. 1g)。

@ 冷冻 粉末 转移 含有 lml 裂解 /结合 缓冲 (100mmol/L Tris-Cl, pH 8; 500mmol/L LiCl; 10mmol/L EDTA, pH 8; 1%LiDS SDS; 5mmol/L = Si 3 Fh HE) AY aR ase

@ 彻底 样品 产生 热量

当心 使 电动 驱动 推荐 安全 措施

© 裂解 离心 30s。 转移 微型 离心 准备 Dynabeads。

© 储存 吸取 1. 5mg Dynabeads oligo(dT)25, iH # FE 300w1, RNase 离心 离心 磁铁 30s。 微型 彻底 除去 离心 MK.

@ 150pl 裂解 /结合 缓冲 〈100mmolL Tris-Cl, pH 8; 500mmol/L LiCl; 10mmol/L EDTA, pH 8; 1%LiDS SDS; 5mmol/L ) 含有 离心 磁铁 微型 彻底 除去 离心

@ 磁铁 离心 离心 150pwl 裂解 /结合 缓冲 HE EER FE ES ES OE PRA SABA SR RRND EP.

温和 混合 室温 杂交 5min。 进行 mRNA 回收 操作

(4) mRNA 回收

© 含有 Dynabeads fl RNA 离心 磁铁 30s 转移 离心 Dynabeads 重新 杂交 确保 回收 poly(A)* mRNA。 必要 Dynabeads 重新 杂交 简单 标记 poly(A) RNA 保存

@O) 离心 磁铁 200nl 洗涤 缓冲 CO. 15mol/L LiCl; 10mmol/L Tris- Cl, pH7.5; lmmol/L EDTA) 洗涤 离心 磁铁 洗涤 缓冲 洗涤 -去 操作

注意 ”必须 彻底 操作 体积 限度 回收 poly(A)+RNA。

@ 磁铁 取出 离心 缓冲 LTE 缓冲 (pH 7.5) ] 结合 poly(A)* RNA Dynabeads 使 Dynabeads 剂量 确定 液体 1Img Dynabeads 5pl 缓冲 。65C 2min 利于 poly (A)* RNA Dynabeads 快速 彻底 离心 磁铁 ,30s 转移 微型 离心 离心 标记 poly(A) ”RNA。

® RNA 马上 使 合适 体积 保存 80C 备用。 有些 RNase 抑制 RNA 溶液 RNase 操作 研究 添加 RNase 抑制 需要

7.6 oligo(dT)-4 @ 4 Z #4

技术 早先 改进 方式 oligoCdT)- lml 结核 注射 直接 紫外 (UV) 吸收 检测 ISCO UA-6 (ISCO, Inc. ,Lincoln,NE), 。83 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

蛋白 (图 7.3)。 RNA 桂子 流出 光学 检测 7.4),UV 流出 RNA 检测 记录 笔记 方法 介绍 方法 费时 方法 直接 poly(A)* RNA poly(A)” RNA 吸收 除了 峰值 7.5) 形状 RNA 完整 纤维 效率 重要 指标 技术 主要 缺点 : 即使 流速 缓慢 RNA 液体 比较 ,不 利于 RNA 9,@ 检测 (OD) 0.1 7. 3 UA-6 紫外 吸收 检测 核酸 溶液 技术 RNA 100~150pg ISCO, Inc. 提供 样品

吸光 检测 记录

Ng 4H Iml = 注射 | | 2 & wae 纯化

poly(A) RNA

7.4 纯化 poly(A)* RNA 方法 。oligo(dT)- lml 注射 柱子 活塞 控制 消毒 除去 RNase。 针头 管子 结合 引入 紫外 〈UV) 检测 检测 测定 核酸 溶液 254nm 波长 吸收 检测 记录 幅度 记录 紫外 检测 核酸 溶液 浓度 样品 结合 情况 记录 系列 试管 收集 流出 检测 收集 冰冻 根据 记录 记录 移动 确定 收集 准确

7.6.1 实验 方案 : 生理 poly(A)+ RNA 纯化

O !

Q 根据 厂家 准备 oligo(dT)- 操作 3 5ml 缓冲 (10mmol/L Tris, pH7.4; 0.05% SDS®) DEPC 悬浮 10mg oligo(dT)-F 4EX

注意 1g oligo(dT) -F#H XW WAFS 20~50 OD & poly(A)+ RNA, BiAMAA RRR F oligo(dT)-

@ WR RNA WERE TE KE. HAIMA RA RNA 协助 沉淀 操作 首先 mRNA 纯化 抵触 核酸 样品 维持 浓度 状态 明显 优势

@ SDS 缓冲 结合 缓冲 合适 SDS 沉淀 堵塞 (尤其 空调 实验 !) SDS 使 RNase 操作 需要 添加 SDS,

. 84 .

7 RNA

纤维 程度 RNA 样品 “ES RAR RICK, WAS RAR RE RNA BS 3 5 oligoCdT)- polyC(A)+ RNA。 参数 明智 oligo(CdT)- 体积 改变 RNA 特点 实验 [现在 oligo(dT)- 150 美元 ]。oligo (CdT)- 剧烈 搅拌 振荡 ;而 温和 翻转 oligo(dT)- 使 oligo(dT)- 悬浮 RNA BK (如 10mg RNA) 使 含有 lml oligo(CdT)- 孔径

@ lml 结核 底部 需要 少量 注射 底部 阻止 oligo(CdT)- 流失 避免 堵塞 注射

注意 ”大 嗜好 商店 玻璃 纤维 操作 消毒 (15min)

® 9ine@ 核糖 核酸 oligo(CdT)- 注射 oligo (CdT)- 沉淀 顶部 。oligo(CdT)- 体积 0. 1ml。

© oligo(dT)- , 2 3ml 结合 缓冲 (500mmolL NaCl; 10mmol/L Tris, pH7.4; 0.05% SDS) 平衡 oligo(CdT)-

© 注射 底部 活塞 活塞 调控 液体 速度 结合 缓冲 上面 oligoCdT)- 气泡

注意 ”到 树脂 活塞 重新 使 活塞 活塞 注射 底部 活塞 开放 状态 oligo(dT)-

© 心地 19 针头 针头 活塞 底部 结合 缓冲 没有 气泡 存在

流出 紫外 检测 [如 ISCO UA-6(ISCO,Inc. , Lincoln, NE)] 相连 检测 254nm 280nm 接管 RNase, 19 针头 紫外 检测 流入 样品 流入 流出 方式 流速 流体 静态 FEA.

注意 LH-CEREEHRRART. BRR ASD ml. poly(A) 尾巴 纤维 oligo 《dT)- 需要 相对 液体 流速 活塞 反复 开关 活塞 扰动 oligo(dT)- oligo(CdT)- 阻塞 检测 样品 材料 流失 采用 什么 柱子 流速 均匀 才能 达到 理想 效果

@g) 连续 结合 缓冲 流出 检测 基线 作者 实验 灵敏 0.1 OD。 含量 10~200pg S RAR BE RNA 流出 必须 设置 灵敏 样品 RNA 含量 决定

注意 ”建议 记录 基线 设置 记录 10% 结合 缓冲 差异 造成 基线 波动

@ 4 RNA #F 500~ 1000p] 结合 缓冲 RNA 溶液 [每 oligo 《dT)- 50mg RNA]j。 缓冲 oligoCdT)- 缓冲 ,将 RNA 溶液 吸入

@ lin=0. 0254m,

- 85 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

RNA 仔细 oligo(CdT)- 液体 流出 使 RNA 溶液 进入 结合 缓冲 缓冲

建议 ”将 样品 65C 5min 快速 冷却 RNA 溶液 破坏 RNA 结构 RNA poly(A) 尾巴 纤维 oligo(dT) 配对 RNA 结构 存在 ,poly(A) 尾巴 olijgo(dT)- 结合

@ poly(A)RNA 流出 记录 笔会 巨大 [图 7.5(a)]。 继续 结合 缓冲

7.5 oligo(dT)- poly(A)+RNA 结合

直接 通过 ISCO UA-6(UV) 检测 设置 0.1 OD, 灵敏 检测 100kg poly(A)* mRNA

必需 (a) 结合 缓冲 ) 细胞 RNA(150pg) 结合 缓冲 连续 冲洗 柱子 流出

215s 检测 数据 基线 poly(A) RNA, (b) 缓冲 ) poly(A)* RNA。 RNA

(a) (b) 产生 产生 明显

建议 ”收集 流出 流出 限度 捕获 poly(A)+ RNA, HFA polyCA)+ RNA 流出 oligoCdT)- 操作

@ 继续 结合 缓冲 检测 记录 基线 回收 poly(A)” RNA, 含有 poly(A)” RNA 流出 冷冻 试管

注意 AW poly(A)” RNA eile. AE RNA 标准 Northern 保护 PCR 阴性

注意 2 RNA 溶液 含有 RNA 沉淀 /或 基因 DNA 流速 显著 降低 显著 降低 表明 降低 气泡 造成 活塞 开放 状态 气泡 重新 调节 流速 解决 问题 极端 例子 oligo(dT)- 普通 形状 影响 oligo(dT)- 通常 降低 oligo(dT)- 沉淀 原来 继续 缓冲 电荷 相反 离子 poly(A)* RNA oligo (dT)- 脱出

B @ 制备 缓冲 45C 回收 poly(A)- RNA。 poly(A) ”RNA 回收 Corex 玻璃 离心 合适 试管 离心 试管 没有 RNase 活性

注意 缓冲 促进 体积 缓冲 快速 poly(A)+ RNA; 喜欢 核酸 溶液 尽量 制备 浓度

@) FAO. 1 F548 FAW) 3mol/L CRA (pH 5.2) .2.5 95%% 207C 重新 沉淀 RNA。 107 细胞 回收 1 5pg poly(A)* mRNA,

注意 “如果 RNA 浓度 RNA 重新 沉淀 毫升 poly (A)+RNA 10pl 10mg/ml 溶液 0. 1 3mol/L 乙酸 (pH 5.2)

。86 -

7 RNA

2. 5 95 乙醇 20C 4h

FA 2~3ml 0. lmol/L NaOH oligoCdT)- 结合 缓冲 重新 oligo(CdT)- 。Parafilm 封口 柱子 4C 100 200pl 缓冲 室温 保存 使 细菌 纤维 生长

7.7 (Ak 42 X@@ poly(A)* RNA

传统 poly(A)+RNA。 才能 完成 相对 RNA (典型 200kg RNA) 制备 工作 主要 缺点 造成 RNA HH, UZ poly(A)*RNA RNA 比例 非常 RNA BRAM. AURA HF CON tRNA ) 沉淀 纯化 RNA。 添加 载体 策略 纯化 poly(A)* RNA WP) RAH. A RNA 相抵

进行 poly(A)+RNA 纯化 基质 oligo(CdT)- (Monomer Sci- ences, Inc. , New Market,AL) oligo(dT)- 通常 结合 100 OD (Asx6o ) poly(A) RNA。 标准 oligoCdT)- 结合 50 80 OD。oligo(CdT)- 实际 结合 取决 生产 厂商 品级 结合 单价 离子 特征 离子 Lit ,oligo(CdT)- 结合 poly(A)+ RNA 容量 结合 缓冲 单价 阳离子 KK- Na 传统 缓冲 oligoCdT)- 离心 收集 olijgo(CdT)- 反复 操作 poly(A)- RNA 效果 避免 流速 注意 oligo(CdT)- 除非 厂家 oligoGdT)- 比例 微型 离心 polyC(A)+ RNA 体积 缓冲 poly(A) * RNA, 获得 RNA 额外 载体 直接 乙醇 沉淀 RNA

作者 oligo(CdT)- RNA 方法 进行 修改 修改 方法 oligo(CdT)- 采用 方法 oligo(CdT)- ) 回收 poly(A)* RNA 容量 操作 必须 严格 控制 RNase 活性 回收 poly(A)+RNA。

7.7.1 实验 方案 : 快速 纯化 poly(A)+RNA

OQ !

@ oligo(dT)- 150ug RNA 需要 100mg (FH) oligo (CdT)- oligo(CdT)- 核酸 污染 微型 离心

注意 必须 RNase oligo(dT)- 没有 RNase 活性 温和 试剂 底部 oligo(CdT)- 试剂 移出 进行

@ 500ul 44 A Bh YK (500mmol/L LiCl; 100mmol/L Tris-Cl, pH 7.5; 1mmol/L EDTA; 0.05% SDS) oligo(dT) -fk MAHA PS, 3 AF 4ES 5min

© BOCA EWM oligo(dT)-thimA 4A. BoA 200X g, 30s 完成 oligo(dT )- jh an ZF EA LE A ROL. FA RS ERO Ach FY ks APE Re 备用

- 87 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

© 离心 ,DEPC 溶解 RNA, 体积 100nl。 65 5min。

注意 ”在 实验 方法 相关 实验 方法 ,RNA 溶液 必须 ,使 poly(A) 结构 纤维 oligoCdT)-

© 体积 结合 缓冲 变性 RNA 溶液 ,使 RNA 溶液 室温 RNA 溶液 oligo(CdT)-

@) 离心 微型 离心 室温 放置 5min。 ty 1~2 *K.,

1500X g 离心 5min 4C )。 转移 干净 “poly(A)-RNA。” 离心

注意 ”如果 缓冲 含有 SDS, 室温 离心 温度 15C, SDS 沉淀

注意 2 实验 poly(A)” RNA 作为 阴性 。poly(A)- RNA 作为 RNA。

© 结合 缓冲 洗涤 oligo(dT)- 5 500nl。 洗涤 1500 5 离心

@ 缓冲 (10mmol/L Tris-Cl, pH7.5; lmmol/L EDTA; 0.05% SDS) oligoCdT)- poly(A)+RNA, 50k1。 DEPC poly(A)* RNA,

注意 ”所 缓冲 纤维 结合 poly(A)+ RNA 缓冲 体积 溶液 含有 poly(A)+ RNA, BRL. RHA AR) th A Bh MEM poly (CA)+RNA 微型 离心 沉淀 RNA。 0.1 体积 3mol/L NaAc (pH5. 2) 2.5 体积 95%% 乙醇 RNA 溶液 干冰 20min K—20C 4h 重新 沉淀 RNA.

@ RNA 离心 乙醇 70%% 配制 ) BE RNA 沉淀 2~3 500xl。 95%% 利于 RNA 沉淀 空气 体积 TE 缓冲 (pH 7.5) RNA。

@ 按照 8 介绍 方法 测定 poly(A)” RNA 溶液 Azeo。

RNA 80C

7.8 参考 文献

Aviv, H., and Leder, P (1972). Purification of biologically active globin messenger RNA on oligothymidylic acid-cellulose. Proc. Natl. Acad. Sci. 69, 1408.

Aziz, N., and Munro, H. N. (1986). Both subunits of rat liver ferritin are regulated at a translational level by iron induction. Nucleic Acids Res. 14, 915.

Buell, G. N., Wickens, M. P., Payvar, F., and Schimke, R. T. (1978). Synthesis of full length cDNAs from four partially purified oviduct mRNAs. J Biol. Chem. 253, 2471.

Cole, C. N., and Stacy, T. P. (1985). Identification of sequences in the herpes simplex virus thymidine kinase gene required for efficient processing and polyadenylation. Mol. Cell. Biol. 5, 2104.

Conway, L., and Wickens, M. (1985). A sequence downstream of A-A-U-A-A-A is required for formation of simian virus 40 late mRNA 3’ termini in frog oocytes. Proc. Natl. Acad. Sci. 82, 3949.

- 8B -

7 RNA

Darnell, J. E., Jr. (1979). Transcription units for mRNA production in eukaryotic cells and their DNA viruses. Prog. Nucleic Acids Res. 22, 327.

Efstratiadis, A., Kafayos, F. C., Maxam, A. M., and Maniatis, T. (1976). Enzymatic in vitro synthesis of globin genes. Ce// 7, 279.

Gil, A., and Proudfoot, N. J. (1984). A sequence downstream of AAUAAA is required for rabbit beta-globin mRNA 3’-end formation. Nature 312, 473.

Gilham, P. T. (1964). Synthesis of polynucleotide celluloses and their use in fractionation of polynucleotides, J Am. Chem. Soc. 86, 4982.

Kramer, A. (1996). The structure and function of proteins involved in mammalian pre- mRNA splicing. Ann. Rev. Biochem. 65, 367.

Manley, J. L. (1988). Polyadenylation of mRNA precursors. Biochem. Biophys. Acta 950, 1.

McDevitt, M. A., Imperiale, M. J., Ali, H., and Nevins, J. R. (1984). Requirement for a downstream sequence for generation of a poly(A) addition site. Ce// 37, 993.

Mercer, J. F. B., and Naora, H. (1975). A comparison of the chromatographic properties of various polyadenylate binding materials. J Chromatogr. 114, 115.

Meyuhas, O., Bibrerman, Y., Pierandrei-Amaldi, P, and Amaldi, F. (1996). Isolation and analysis of polysomal RNA. Jn “A Laboratory Guide to RNA: Isolation, Analysis, and Synthesis” (P. A. Krieg, Ed.), pp 65-81. Wiley Liss, New York.

Meyuhas, O., Thompson, A. E., and Perry, R. P. (1987). Glucocorticoids selectively inhibit the translation of ribosomal protein mRNAs in P1798 lymphosarcoma cells. Mol. Cell. Biol. 7, 2691.

Moore, C. L., and Sharp, P. A. (1985). Accurate cleavage and polyadenylation of exoge- nous RNA substrate. Ce// 41, 845.

Nevins, J. R., and Darnell, J. E. (1978). Steps in the processing of Ad2 mRNA: poly(A)* nuclear sequences are conserved and polyadenylation precedes splicing. Ce// 15, 1477.

Pierandrei-Amaldi, P, and Amaldi, F. (1994). Aspects of regulation of ribosomal protein synthesis in Xenopus laevis. Genetica 94, 181.

Proudfoot, N. J., and Brownlee, G. G. (1976). 3’ non-coding region sequences in eukaryotic mRNA. Nature 263, 211.

Ross, J. (1995). mRNA stability in mammalian cells. Microbiol. Rev. 59, 423.

Sadofsky, M., and Alwine, J. C. (1984). Sequences on the 3’ side of hexanucleotide AAUAAA affect efficiency of cleavage at the polyadenylation site. Mol. Cell Biol. 4, 1460.

Takagaki, Y., Ryner, L.. and Manley, J. L. (1988). Separation and characterization of a poly(A) polymerase and a cleavage/specificity factor required for pre-mRNA polyadenylation. Ce// 52, 731.

Williams, J. G. (1981). The preparation and screening of a cDNA clone bank. Jn “Genetic Engineering.” (R. Williamson, Ed.), pp 1-59, Vol. 1. Academic Press, New York.

Ziff, E. B. (1980). Transcription and RNA processing in the DNA tumor viruses. Nature 287, 491.

(刘建华 ; SH FAR)

89 -

SE RNA BWR SE il

8.1 £A FE

纯化 RNA 样品 进行 评价 质量 重要 肯定 mRNA 完整 纯化 RNA 费用 确定 mRNA 完整 特别 慎重 使 RNA 试验 产生 结果 同人 腐烂 木头 建造 房子 那样 含量 检测 降解 RNA 进行

方法 检测 纯化 RNA 完整 RNA 体质 检测 方法 RNA 阳性 介绍 方法 ,RNA 纯化 立即 检测 电泳 《质量 控制 技术 1) RNA 保存 使 重新 检测 RNA 电泳 试剂 纯化 保存 《〈 使 80C 保存) RNA, 使 电泳 鉴定 合格 RNA, 质量 保障

8.2 质量 控制 技术 1 RNA

,RNA 琼脂 判断 RNA 质量 检测 方法 13 10 介绍 电泳 参数 操作 方法 生物 活性 RNA, 电泳 RNA 变性 容易 RNA 样品 简单

28S 核糖 RNA(CrRNA) 18S rRNA 比值 判断 RNA 样品 指标 哺乳 动物 RNA 荧光 比值 2 : 1。 达到 甚至 超过 2.5: 1 研究 ,28S rRNA 18S rRNA 荧光 比值 代表 结果 “目测 ”的 方法 估计 28S rRNA 18S rRNA 荧光 比值 确定 28S rRNA 18S rRNA 荧光 ,28S rRNA 18S rRNA 比值 电泳 特征 重要

RNACeRNA) 样品 电泳 28S rRNA 18S rRNA 几乎 没有 弥散 转移 RNACtRNA) 5S rRNA 5.8S rRNA 染色 些小 RNA 28S rRNA 18S rRNA 电泳 清晰 RNA 样品 核酸 污染 18S rRNA 弥散 现象 弥散 现象 RNA 样品 降解 电泳 严重 弥散

90 -

8 RNA 质量 控制

RNA 变性 充分 RNA 结构 存在 注意 没有 溶解 RNA 电泳 6 描述 特征 现象 储存 浓度 必须 确定 RNA DNA 彻底 溶解 核酸 储存 取出 适量 液体 代表 核酸 样品 RNA 弥散 这些 阻止 RNA 现象 N- (sarkosyl) 缓解 变性 造成 问题 仔细 没有 除去 DNA®, Ja RNA FYE CANS 5 附录 5 描述 ) 污染 DNA RNA 产生 严重 影响

Northern 添加 甲醛 酰胺 酰胺 使 变性 电泳 核糖 RNA 非常 明显 注意 50%% 酰胺 2mol/L 尿素 利于 样品 变性 使 清晰 没有 添加 变性 模糊 观测 含量 丰富 HY) 28S rRNA ffl 18S rRNA 确定 RNA 样品 完整 CA 8.1).

28S Bo 18S

(a) (b)

Al 8.1 RNA 完整 检测 Ca) Swiss 313 纤维 细胞 RNA,, 微型 琼脂 (7cmX8cm) 电泳 样品 5wg 纯化 RNA, BeBe ze 1. 2 琼脂 -甲醛 电压 50V, 1. 5h。 SYBR 绿 1~6, 28S 18S 核糖 RNACrRNA) 清晰 ,28S rRNA 荧光 RNA 样品 完整 。(b) 纤维 细胞 RNA, 微型 琼脂 〈6cmX9cm) 电泳 1 RNA 标准 2~5 纤维 细胞 RNA 样品 1. 2 -甲醛 电压 50V, 1. 5h。 染色 2 5 显示 样品 降解 程度 逐步 RNA RNase 污染 避免

SYBR RY Abt, RNA 电泳 荧光 污染 基因 DNA (图 8.2)。 现象 定量 RNA 样品 现象 DNA 含量 引起 荧光 意味 RNA 样品 没有 DNA 污染 DNA 含量 检测 污染 DNA 作为 模板 污染 DNA RNA 聚合 严重 负面 影响 消除 RNA 样品 污染 DNA 方法 RNase DNase 样品 相应 DNA 彻底 除去 19

@ RNA 除去 DNA 方法 包括 完整 细胞 离心 RNase DNase 核酸 样品 - ,RNA 密度 离心 方法 结合 使 91

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

DNA 存在 产生 PCR AW. 8.2.1 实验 方案

标准 变性 1. 2%% “〈 面积 : 7cm X 8cm) 电泳 确定 RNA 完整 RNA, 迅速 电泳 消除 结构 影响

D 琼脂 1XTAE 缓冲 ?, 1.2 浓度 琼脂 冷却 65C

注意 “如果 需要 直接 融化 0. 5ng/ml。 直接 检测 。SYBR 绿 电泳

ATLA ABER, ZI SYBR 绿 造成 核酸 带宽 清晰 1. FABRE peg 4 cypR pay ea pe

ee ee © 10 pl TE 缓冲 稀释 eae: 1~5yg RNA.

注意 如果 难以 使 RNA 变性 ,那么 10kl RNA 溶液 2.5ml 甲醛 37%) 5. 0pl 酰胺 使 甲醛 酰胺 根据 厂商 提供 安全 资料 (MSDS) 通风 操作 酰胺 2mol/L 尿素 单独 RNA 样品

@ 65C RNA 5min, 离心 样品 离心 底部

® MA lxl 10X 缓冲 (50% Hh, Immol/L EDTA, 0.25% ),

注意 RNA 样品 甲醛 酰胺 2pl 缓冲

注意 2 ”不必 使 标准 ; 实验 快速 检测 RNA 完整

@ 75 100V 电压 电泳 染料 2 3cm。 观测 样品 情况 电泳 提高

© 除非 染料 直接 琼脂 〈0.5pg/ml) 溶液 10min。 SYBR & II 4 HERE 25 30min。 通常 检测 RNA 样品 . DNA 污染

注意 1 突变 操作 4)

注意 2 ”使 紫外 线 透射 便携 紫外 (UV) 保护 眼睛 皮肤 紫外 线 伤害

@) 检测 RNA 样品 质量 紫外 拍照 存档 11 ) 作为 RNA 使 参考 极其 重要

8.2 RNA 样品 SYBR

8.3 质量 控制 技术 2: SARI KEMBEAzAG

吸收 光谱 确定 样品 RNA 含量 UV 吸收 光谱 直接 测定 核酸 纯度 计算 生物 材料 核酸 细胞 RNA

@ 50XTAE 缓冲 242g Tris ; 100ml 0.5mol/L Naz-EDTA, pH 8.0; 57. 1ml KARR. BE KA. Me 琼脂 1XTAE 1XTAE。

8 RNA 质量 控制

细胞 数量 )。 核酸 样品 230 320nm 特征 吸收 “〈 8.3)。 标准 曲线 形状 污染 实际 投入 RNA RNA 密切 相关 绝对 忽视 RNA 样品 UV 吸收 光谱

8.3.1 核酸 浓度 纯度 鉴定

核酸 操作 功率 依赖 反应 核酸 纯度 基因 表达 8.3 纯化 RNA 典型 紫外 《〈UV) 吸收 光谱 样品 数据 标准 基础 纯化 DNA 紫外 吸收 光谱 标准 RNA WE. 然后 /引物 /,,260"m 吸收 线 RNA 模板 比值 固定 [该 比值 RNA aly ee 互补 DNACCDNA) 关键 ]。 须知 精确 浓度 RNA DNA 样品 包括 样品 浓度 完整

8.3.1.1 Moe HHH

利用 核酸 吸收 紫外 线 260nm 吸收 特性 DNA RNA 样品 浓度 260nm 波长 吸收 计算 样品 核酸 浓度 :

[RNA ]pg/ml= Azgo X X40.0 KP Asz6o 260nm 吸收 密度 ); 稀释 倍数 稀释 因子 200 500) ; 40. 0 RNA 平均 吸收 系数 同样 相似 方法 确定 DNA 样品 浓度 : [DNA ]pg/ml= Azgo X Fe REFER X 50. 0 Asz6o 260nm 吸收 密度 ) ; 稀释 倍数 稀释 因子 GH HE 200~500); 50. 0 DNA- 平均 吸收 系数

WER, Ei RNA DNA 浓度 计算 公式 数据 单位 wg/ml。 RAG, UREA ILA pe/pl 表示 比较 方便 样品 稀释 数学 计算 简单 数据 1000, 浓度 单位 pe/pl 数据

精确 确定 核酸 浓度 〈G C) 含量 Beer @ 特定 RNA DNA 吸收 系数 情况 40.0 50.0 RNA DNA 平均 吸收 系数 胸腺 尿 吸收 系数 ,DNA 污染 RNA 样品 RNA 污染 DNA 样品 紫外 吸收 光谱 计算 样品 浓度 40ug/ml RNase 37C DNA 样品 30min, 重新 沉淀 DNA, 彻底 除去

@ 根据 Bouguer-Beer GH PMH Beer ) ,A=spc,A 吸收 ; es 摩尔 吸收 系数 ; 0 ; c EMR 浓度 BSH M AAAI eA, 因为 Aror=Ali A: As …, 计算 核酸 混合 吸收 系数 RNA 吸收 系数 精确 44. 19 93 e

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

DNA 样品 RNA。 RNA,DNA 电泳 迁移 常会 增加 使 DNA 片段 估计 没有 RNase 污染 DNase RNA 样品 彻底 除去 RNA 样品 污染 DNA

核酸 样品 按照 (1 : 200)~(1 : 500) 稀释 石英 @ 溶液 紫外 吸收 广 提供 使 塑料 核酸 样品 紫外 吸收 塑料 紫外 定购 仔细 阅读 塑料 ML AY 7" tia ST AA

许多 测量 lL 样品 喜欢 设备 非常 昂贵 宽裕 实验 支配 1 5mmol/L 磷酸 (Naz HPO4) Bk TE 缓冲 稀释 核酸 样品 稀释 ), 相同 缓冲 光度 e

Azeo/Azso 比值 作为 核酸 纯度 指标 提出 质疑 CGlasel, 1995; Huberman, 1995; Manchester, 1995; Manchester,1996) Wilfinger (1997) 稀释 pH 影响 核酸 Azxio/Azso 比值 ,pH 7.5 8.5 Azxio/Asso 比值 检测 核酸 纯度 常用 缓冲 磷酸 ) DNA RNA 样品 稀释 使 溶液 pH 范围 生物 pH 6. 0 左右, 微弱 酸性 精确 测定 核酸 浓度 溶剂

方式 测定 核酸 浓度 使 样品 达到 推荐 老式 吸收 COD) 0. 1 使 体积 使 测量 必需 体积 避免 样品 稀释 稀释 常常 样品 稀释 测量 昂贵 购买 体积 石英 中。 同样 重要 清楚 溶液 吸收 核酸 核酸 细胞 RNA 混合 mRNA) 单独 贡献

Axzio 样品 浓度 质量 纯度 白质 /或 溶剂 吸收 偏离 明显 Azso/Azsgo Azio/Azso 比值 样品 纯度 RNA 样品 Azxio/Aszso 比值 2.0 0.1, DNA 样品 Azso/ Aszso 比值 1. 8 0.1。 RNA DNA,Aszio/Azso 比值 2.0 2. 4. Asz6o/Azso 比值 范围 污染 纠正 措施 Azso/Azso 数值 RNA 蛋白质 。Aszso/Azso 裂解 ) Bk BRAC ATS He. WER 细胞 裂解 缓冲 ) 8 乙醇 污染 问题 想象 严重 方法 乙酸 乙醇 重新 RNA, 70%% 2 3 Azso/Aszso 比值 2.4, 方法 重新 沉淀 RNA 样品 植物 RNA, Azio/Azso 比值 表明 污染

RNA 问题 ”蛋白质 存在 增加 样品 280nm 波长 吸收 ,Azeo/Azso 比值 降低 样品 纯度 问题 指标 蛋白 彻底 样品 CDNA RNA) YF 100~200ul 消毒 缓冲 ) 体积 : 氯仿 : (25 : 24 : 1) 体积 氯仿 氯仿 : MORE (24:1) 蛋白 存在

© 石英 正在 浸泡 核酸 消毒 彻底 清洗 石英 极其

94 -

8 RNA 质量 控制

白质 清楚 表明 样品 蛋白 污染 RNA 样品 体积 重新 沉淀 提高 核酸 操作 代价 损伤 样品 稳定 回收 引入 核酸 污染 风险 必需 消除 RNA 问题 RNA 白质 污染 苯酚 : 氯仿 值得 。RNA 沉淀 70%% 75%% 介绍 方法 测定 核酸 浓度

尽管 特定 样品 Azso/Azso Axzso/Azso 核酸 样品 质量 优秀 指标 核酸 样品 紫外 吸收 通常 230 320nm 紫外 吸收 光谱 非常 重要 紫外 吸收 光谱 曲线 CAL 8. 3) 吸收 260nm。320nm 紫外 线 吸收 0, 吸收 光谱 曲线 基线 230nm 紫外 吸收 特性 测定 核酸 浓度 纯度 几乎 没有 意义 质量 核酸 样品 紫外 吸收 光谱 波长 260nm 线 260nm 线 测定 260~280nm 紫外 吸收 光谱 特征

初步 核酸 质量 理由 非常 明显 紫外 确定 样品 核酸 比较 同样 核酸 含量 测定 Azio/Aszso 比值 迅速 确定 样品 物质 污染 扫描 230~320nm 紫外 吸收 知道 吸收 光谱 线 形状 注意 除了 改变 260nm 280nm 紫外 吸收 改变 230~ 320nm 紫外 吸收 曲线 形状 特征 )- 掩盖 240~ 260nm 紫外 吸收 光谱 倾斜 特征 迅速 70%% 75%% 《如 同一 实验 方法 建议 ) 9。 步骤 核酸 沉淀 透析 方法 除去 核酸 样品 ae 3 A>, (adie AG 波长 扫描 设备 迅速 确定 样品 含有 知道 RNA 影响

8.3.1.2 2 光度

没有 价格 昂贵 样品 含量 精细 方法 测定 样品 核酸 浓度

电泳 核酸 荧光 强度 含量 核酸 荧光 强度 比较 实验 8.4 标准 质量 DNA 稀释 溶液 比较 确定 核酸 含量 广 购买 ”确定 核酸 样品 浓度 2. SO BRAS RE 含量 核酸 作为 标准 标准 @X174 进行 电泳 。1 Wl 浓度 核酸 溶液 ; 2 DNA XDNA。 DNA 标准 稀释 浓度 ] 核酸 溶液 ; 3、4 5 RNA DNA 同一 电泳 CA 100ng、200ng 400ng @X174 DNA; 6 8.4) 软件 确定 st pina aent no ais

; Ps Ps Ps p. 150bp 像素 浓度 样品 像素 浓度 23% 7, oe See 像素 比较 实验 CDNA 合成 效率 常用 方法 确定 核酸 浓度 方法 确定 核酸 浓度 速度 准确 采用 SYBR 绿 、Gel Star SYBR 物质 染色 结果 相当 准确 11 详细 介绍 @O 确定 核酸 浓度 方法 少量 核酸 样品 固定 特定 进行

@ FH 70% 乙醇 特别 容易 除去 乙酸 (NaAc) 95 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

DNA Dipsticks (Invitrogen, Carlsbac, CA; item K5632-01) lng 含量 RNA、 DNA DNA 溶液 样品 稀释 进行 系列 洗涤 保温 试剂 核酸 浓度 结合 结合 )、 容量 DNA Dipsticks 定量 稀释 PCR 模板 非常 方便

@) 方法 简单 肉眼 观测 浓度 核酸 溶液 浓度 核酸 样品 含有 荧光 染料 琼脂 电泳 紫外 线 身上, 染料 荧光 强度 核酸 正比 标准 含量 样品 强度 粗略 估计 含量 样品 核酸 浓度 实验 需要 制备 含有 0. Spg/ml 1XSYBR 绿 @ 琼脂 Syl 稀释 标准 样品 溶液 样品 溶液 避免 样品 扩散 溶液 定量 完全 进入 紫外 线 透射 便携 观察 荧光 强度 采用 方法 估计 核酸 样品 浓度 Syl 稀释 核酸 样品 体积 1xg/ml 溶液 1XSYBR 绿 混合 塑料 紫外 线 强度 浓度 DNA 标准 比较 〈Wienand 1978) 方法 方法 作为 教学 工具

当心 ”与 紫外 线 便 紫外 操作 造成 严重 伤害 紫外 情况 工作 佩戴 合适 防护 眼罩 皮肤

8.4 质量 控制 技术 3: RNA 4 & (#& RT-PCR

PCR 生物 主流 技术 广泛 疑问 彻底 细胞 生物 问题 研究 方法 实验 引物 优化 反应 PCR 转录 产物 达到 目标 8。 制备 RNA 样品 RNA 样品 获得 产物 灰心 实验 标准 针对 目标 引物 进行 目标 特定 RNA 样品 样品 干净 、RNA 完整 获得 产物 引物 Bf- 蛋白 GAPDH 引物 ) 测试

RNA 样品 RNA 样品 质量 问题 获得

PCR 产物 试验 引物 产生 PCR 产物 理性 原因 RNA 模板 获得 PCR 产物 RNA 样品 进行 引物 RNA 样品 质量 合格

8.5 质量 控制 技术 4: Northern

Northern 实验 工具 Northern 任何 RNA 样品 进行 质量 控制 工具 Northern 标记 oligo(dT)

@ /琼脂 制备 1 琼脂 糖水 溶液 溶液 冷却 55C 储备 〈10mg/ ml) 0. 5pg/ml。 混合 琼脂 溶液 吸入 蒸气 融化 琼脂 /省 混合 100mm Petri 培养 凝固 1X SYBR 绿 相同 方法 制备 SYBR 绿

@ 19 22 介绍 基于 RNA PCR 技术 [ 转录 聚合 CRT-PCR) J.

96

8 RNA 制备 质量 控制

poly(T) RNA BK poly(A) * RNA 严格 杂交 放射 poly(A)+ RNA 严格 印迹 polyCT) 同一 印迹 基因 特异 杂交 RNA 样品 传统 方法 7 ) 标记 poly(T) 检测 少量 44 RNA, jie RNA Fim AY poly(A)” RNA 含量 10 详细 介绍 方法 基因 特异 检测 基因 转录 产物 含量 poly(I) 检测 po- ly(A)* RNA 含量 控制 目的 RNA 样品

8.6 质量 控制 技术 S$: RNAABZ EGA

生物 完整 mRNA 翻译 mRNA 编码 mRNA 微量 注射 合适 细胞 (如 细胞 ) mRNA 细胞 翻译 系统 细胞 裂解 ) 确定 mRNA 翻译 。mRNA 翻译 产生 特定 重复 蛋白 技术 体外 翻译 技术 合适 抗体 翻译 常常 免疫 沉淀 技术 特定 领域 质量 控制 技术 翻译 技术 难度 使 RNA 体外 翻译 检测 RNA 样品 质量

8.7 参考 文献

Glasel, J. A. (1995). Validity of nucleic acid monitored by 260nm/280nm absorbance ratios. BioTechniques 18, 62.

Huberman, J. A. (1995). Importance of measuring nucleic acid absorbance at 240nm as well as at 260 and 280nm. BioTechniques 18, 636.

Manchester, K. L. (1995). Value of A260/A280 ratios for measurement of purity of nucleic acids. Bio Techniques 19, 208.

Manchester, K. L. (1996). Use of UV methods for the measurement of protein and nucleic acid concentrations. BioTechniques 20, 968.

Wienand, U., Schwarz, Z., and Felix, G. (1978). Electrophoretic elution of nucleic acids from gels adapted for subsequent biological tests: Application for analysis of mRNAs from maize endosperm. FEBS Lett. 98, 319.

Wilfinger, W. W., Mackey, K., and Chomczyski, P. (1997). Effect of pH and ionic strength on the spectrophotometric assessment of nucleic acid purity. Bio Techniques 22, 474.

(eH ; SHFR)

97 -

SIE PRED Wasi

91 基本 原理

培养 细胞 生物 质量 RNA 仅仅 基因 表达 研究 )。 Northern 印迹 保护 DNA (cDNA) 文库 构建 - (RT-PCR) 研究 评价 实验 方案 斑点 印迹 系统 目标 mRNA 值得 简单 样品 生化 “初步 ”的 判断 斑点 印迹 方法 确定 纯化 RNA、 DNA, cDNA 进行 杂交 鉴定

斑点 印迹 非常 相近 方法 印迹 快速 检测 细胞 裂解 纯化 RNA 特定 RNA 序列 相对 含量 需要 电泳 方面 信息 斑点 印迹 结果 估计 样品 目标 RNA 含量 非常 重要 实验 设计 肯定 涉及 cDNA 合成 聚合 (PCR) 进行

斑点 印迹 斑点 印迹 装置 (图 9. 1) 印迹 装置 (图 9. 2) 真空 st RNA 样品 直接 RNA 固定 表面 垂直 方向 排列 稀释 样品 9. 3) 排列 易于 11 ) 定量

9.1 微型 印迹 装置 真空 9.2 微型 印迹 装置

直接 样品 稀释 表面 真空 直接 样品 稀释 印迹 装置 模式 面积 12. 5mm2 表面 面积 6mm2 2mm’, Schleicher&-Schuell Bioscience Hf it Schleicher& Schuell Bioscience

. 98 .

SIS 斑点 印迹

/h 0 @ 2444 6 ba 0) 12"? on aS Uae 60

-ACTH | | :ACT LI414

9.3 印迹 显影 皮质 激素 (ACTH) 导致 皮质 细胞 P-450sccmRNA 浓度 增加 RNA。 微型 印迹 装置 (CSchleicher& Schuell) RNA 硝酸 纤维 样品 20mg RNA。 pBSCC-2 质粒 模板 缺口 翻译 产物 杂交 样品 样品 相同 照片 Dr. Maliyakal John 。John M. E. ,John M.C., Ashley P. ,MacDonald R. J. ,Simpson E. R. Waterman M. R. (1984). Identification and characterization of cDNA clones specific for cholesterol side-chain

cleavage cytochrome P-450. Proc. Natl. Acad. Sci. 81, 5628-5632

射线 记录 斑点 信号 反映 RNA 样品 杂交 程度 印迹 杂交 杂交 技术

斑点 印迹 核酸 检测 poly(A) RNA、 细胞 RNA、 DNA、cDNA、PCR 产物 片段 常用 斑点 印迹 筛选 鉴别 克隆 差异 表达 基因 同类 差异 杂交 稀释 进行 检测 稀释 斑点 排列 印迹 装置 清洗 容易 使 斑点 印迹 装置 使

9.2 BEPEOES HHS.

斑点 印迹 技术 明显 优点 快速 制备 杂交 核酸 样品 需要 变性 核酸 样品 直接 杂交 纯化 RNA 纯化 细胞 裂解 斑点 印迹 检测 纯化 细胞 裂解 印迹 细胞 斑点 印迹 快速 印迹 (Costanzi Gillespie,1987) 印迹 模式 样品 稀释 检测 非常 方法 速度 同时 样品 方法 迅速 样品 细胞 生化 情况 印迹 模式 检测 基因 表达 实验 操作 基因 表达 影响 方面 斑点 印迹 生物 完全 动物 植物 获取 RNA 理想 方法 印迹 结果 作为 基础

斑点 印迹 印迹 装置 核心 快速 制备 印迹 相同 整个 操作 必须 避免 RNase 活性 印迹 没有 什么 技巧 ,非常 杂交 采用 尼龙 杂交 尼龙 尼龙 杂交 AX 射线 理想 放射 同位 标记 ), 斑点 闪烁 Cerenkov 计数 数据 (cpm) 补充 放射 显影 数据

当然 进行 斑点 印迹 检测 斑点 印迹 没有 标记 ) 于波

98)

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

标记 NA 杂交 细胞 模式 同时 检测 基因 表达 17 检测 方法

斑点 印迹 模式 几何 排列 杂交 结果 完美 方式 实验 斑点 印迹 检测 同时 基因 表达 情况 方法 进行 检测 非常 理想 结果 阳性 阴性 表示 结果 易于 标准

斑点 印迹 缺点 操作 紧密 相关 斑点 印迹 需要 进行 直接 样品 印迹 产生 定量 数据 ;信号 强度 目标 基因 转录 产物 确定 基因 转录 产物 方法 判断 转录 产物 核糖 RNA (rRNA) 亲和力 杂交 问题 (因为 样品 含有 rRNA) 需要 理想 阳性 阴性 尼龙 PVDF 核酸 检测 物理 固定 表面 使 进行 核酸 杂交 利于 定量 检测

9.3 合适 阳性 阳性

斑点 印迹 印迹 定量 结果 主要 缺点 缺乏 电泳 具备 定性 检测 使 检测 结果 真实 印迹 理想 阳性 阴性 杂交 特异 非特 异性 结合 浓度 rRNA tRNA 溶液 没有 使 显示 样品 poly(A)? RNA, RHE rRNA, 交叉 杂交 程度 杂交 杂交 采用 严格 Hind ADNA Hae @X174 DNA (琼脂 标准 ) 观测 杂交 信号 常用 DNA 标准 RNA 标准 采用 任何 DNA, 鉴定 PCR 产物 缓冲 缓冲 杂交 信号 包括 目标 RNA 相同 cDNA “与 配对 ) 稀释 溶液 产生 信号 强度 取决 稀释 程度 8。 阳性 预期 相同 剂量 阳性 产生 相同 强度 信号 使 印迹 系统 采用 浓度 阳性 确定 印迹 检测 线性 范围 X 射线 显影 准确 测量 印迹 检测 没有 胶片 线性 范围 非常 狭窄

究竟 斑点 印迹 印迹 考虑 样品 面积 样品 浓缩 表面 面积 2mm2 面积 6mm2 12. 5mm2 ), 印迹 产生 检测 RNA RNA, 印迹 定量 客观 检测 感度 印迹 方式 获得 结果 没有 印迹 数据 定量 检测 基础

9.3.1 实验 方案 9@8: RNA 斑点 印迹 O MFE! RNA 样品 接触 试剂 必须 没有 核酸 活性

@ 阳性 照会 产生 非常 杂交 信号, 阳性 核酸 稀释 杂交 杂交 掩盖 周围 信号 测试 样品 阳性 周围 @ 采用 方法 Schleicher&Schuell (1995). 100 -

9 斑点 印迹

Q 根据 书籍 提供 方法 纯化 RNA。RNA TE 缓冲 (10mmol/L Tris-HCl; lmmol/L EDTA, pH 7.5) 斑点 100 200x1, 1 10ug RNA。 稀释 那些 试验 必须 RNA。 RNA 储存 80C

@ 100kl RNA 稀释 6Opl 20 柠檬 盐水 (SSC) 缓冲 40pl 37% 甲醛 储备 9。60C 温浴 15min, 使 核酸 变性

注意 ”此 印迹 装置 使 变性 核酸 样品 迅速 杂交

@ RNA 变性 湿 尼龙 smin。 必须 采用 使 6 X SSC 缓冲 平衡 吸水 (Schleicher& Schuell, 1995, #GB003 替代 )

注意 ”所 离子 强度 取决 电荷 使 必须 按照 厂家 指示 平衡

© 缓冲 饱和 GB003 吸水 尼龙 吸水 BAR mR TRL. PRE. BRIER.

© 斑点 印迹 装置 除去 残余 缓冲 500nl 6 X SSC 清洗

© 100 400nl 核酸 溶液 6 < SSC

© 样品 尼龙 300wl 6XSSC 清洗 印迹 装置 取出

© 根据 指导 RNA 固定 常用 紫外 照射 固定 12 固定 技术 ) 使 存在 凉爽

@ 杂交 严格 清洗 体操 14 )

@@ 适当 方法 检测 方法 取决 标记 CA 15 讨论

9.3.2 实验 方案 8: DNA 斑点 印迹

印迹 适用 DNA 鉴定 。DNA 斑点 印迹 RNA SERED. MEA KS HE DNA 变性 方法 RNA 斑点 印迹 注意 事项 同样 适宜 DNA 斑点 印迹

© MFE! DNA 样品 接触 保证 试剂 没有 核酸 活性

GO 普遍 使 方法 纯化 基因 DNA 合成 cDNA。 检测 使 基因 DNA 储存 1. 0mg/ml。DNA pH 8.0 TE 〈10mmol/L Tris-HCl; lmmol/LEDTA,PpH 8.0) 真空 含有 5 10wg H DNA WH (100~200nl) AMAR 中。 根据 需要 TE 缓冲 稀释 DNA 样品

注意 ”检测 拷贝 序列 需要 DNA。

@ 100nl WF TE 缓冲 DNA Wk. MA 10ul 2mol/L NaOH,37C 10min。 然后 40pl 20 SSC。 杂交 DNA 混合

@@ 使 (HCHO) 必须 刚刚 离子 ,pH 4.0。 使 酰胺 (HCONH:) 必须 离子 酰胺 须根 提供 安全 方法 (MSDS) 操作 @@ 采用 方法 Schleicher&Schuell (1995)

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

20XSSC, 体积 2mol/L NH4Ac (pH 7.0), DNA 放置

注意 1 斑点 印迹 装置 马上 变性 DNA 样品 杂交

注意 2 ”最 尽快 变性 样品 杂交 避免 变性 重新 退火

DNA 湿 尼龙 杂交 5min。 使 杂交 面积 尽量 使 6XSSC 缓冲 吸水 〈Schleicher& Schuell # GB003 替代 )

注意 ”所 离子 强度 取决 表面 电荷 厂家 操作 手册 平衡 杂交

© 缓冲 饱和 GB003 吸水 斑点 印迹 装置 尼龙 样品 面板 夹子 固定 正确 ,9O 接触

© 采用 排出 斑点 印迹 装置 杂交 残余 缓冲 500pl 6 X SSC 溶液 清洗

@ HfL EF 100~400n] DNA HR. WIR. DNA 溶液 6XSSC HF.

@ DNA 溶液 尼龙 300n1 6X SSC 清洗 清洗 杂交 真空 斑点 印迹 装置 取出 杂交

@ 根据 厂家 指导 DNA 固定 杂交 紫外 照射 方法 进行 DNA 固定 COL 12 固定 技术 ) 即使 保存 凉爽

@ 杂交 封闭 杂交 严格 清洗 体操 14 介绍 )

@ 适当 方法 检测 取决 标记 15 讨论 )

9.4 斑点 印迹 数据

斑点 印迹 数据 : 没有 进行 进行 定性 检测 模式 影响 基因 表达 检测 标准 方法 敏锐 意识 浓度

溶液 缓冲 核酸 溶液 斑点 印迹 装置 容易 堵塞 杂交

负载 样品 造成 “点 饱和 ”, 核酸 超过 容量 使 降低 结合 试剂 稀释 核酸

尽管 斑点 印迹 线性 范围 斑点 印迹 操作 核酸 容易 超过 结合 容量 X 射线 胶片 线性 范围 狭窄 斑点 印迹 线性 范围 狭窄。 信和 强度 样品 容易 胶片 使 斑点 模糊 减少 确定 首次 鉴定 生物 材料 稀释 样品 确定 样品 动力 范围 显影 需要 数字 表示 样品 测定 cpm 尽管 额外 数据 切割 重复 使 方法 检测 特定 交叉 杂交 阴性 阳性 增加 检测 提供 检测 忠实 间接

合成 EDNA、RT-PCR、 电泳 核酸 印迹 相对 容易 开始 研究 斑点 印迹 选择 印迹 “图 : 表示 杂交 样品

*。 102

BIS 斑点 印迹

漂亮 实际 构筑 数据 排列 几何 进行 检测 样品 顺序 杂交 检测 准确 定量 选择 检测 方法

95 参考 文献

Costanzi, C., and Gillespie, D. (1987). Fast blots: Immobilization of DNA and RNA from cells. In “Guide to Molecular Cloning Techniques” (S. L. Berger and A. R. Kimmel, Eds.). Academic Press, San Diego, CA.

Schleicher and Schuell. (1995). Nucleic acid dot/slot-blots onto s&s transfer media. Jn “Blotting, Hybridization, and Detection,” 6th ed. pp 20-22 Schleicher & Schuell, Keene, NH.

(刘建华 ; SHR)

103

当心 ”电泳 身体 潜在 伤害 使 电泳 仪器

10.1 基本

众多 离散 基因 复合 基因 表达 调节 细胞 生化 反应 突出 转录 事件 基本 方法 信使 RNACmRNA) 均一 RNAChnRNA) 作为 基因 表达 参数 进行 研究 方法 建立 基础 特定 RNA 变化 反映 细胞 周期 重要 生化 事件

方法 核心 RNA 建立 促进 目的 mRNA 互补 核酸 杂交 目的 RNA 进行 快速 定性 定量

电泳 常规 实验 方法 根据 。Northern DT. Sl 核酸 保护 形式 定量 〈RT-PCR) 使 电泳 方法 检验 RNA® 通用 方法 何方 提纯 RNA 样品 通过 电泳 (RNA 提纯 方法 5 6 )。 Northern 印迹 细胞 RNA 样品 细胞 RNA 样品 poly(A)* RNA poly(A) RNA 样品 需要 通过 电泳 进行 转移 尼龙 硝酸 纤维 表面 (Alwine ,1977,1979)。 印迹 目的 RNA 互补 进行 杂交 Southern (Southern, 1975) 差异 研究 电泳 杂交 Southern DNA RNA 方法 RNA 生物 物理 研究 受到 限制

10.2 GRO 46

电泳 任何 准备 RNA 样品 确保 RNA 标准 道中 样品 相同 标准 哪些 方面 ? 细胞 RNA、 细胞

© 产物 RNA, 细胞 细胞 细胞 RNA。 研究 RNA 反映 转录 速度 转录 周转 速度 参数 17 104 -

10 ik

RNA poly(A)+ mRNA 标准 方法 相同 ? 标准 必须 提供 合理 恰当 依据 使 电泳 样品 信号 强度 ; 根据 阳性 阴性 样品 信号 意义

电泳 样品 标准 注意

@ 质量 作为 标准 浓度 样品 作为 基准 样品 稀释 样品 浓度

@ 电泳 染色 目测 RNA 样品 样品 完整 同样 核糖 RNA(CrRNA) 注意 进行 标准 操作 道中 RNA, 解决 问题 重要 转录 照相 ,rRNA

@ “看 基因 (这 基因 表达 操作 影响 RNA 进行 杂交 标准 选用 基因 PALABRA 〈B-actin)、 蛋白 、GAPDH mRNA。 tRNA 进行 标准 注意 细胞 刺激 反应 情况 进行 校准 转录 适用 情况 转录 实验 刺激 转录 转录 任何 细微 改变 细胞 生化 认识 变化 基因 表达 评估 13

检测 RNA 样品 浓度 使 RNA 质量 (ug) (Argo) 使 广泛 标准 方法 poly(A)* RNA 道上 2 5pg 样品 足以 ih RAKE mRNA. RZ, BUN BONA 15 ~ 20pg RNA 细胞 RNA。 特殊 系统 ,poly(A)+RNA BUR, WHEE ASN oligo(dT) HE RNA 进行 检测 FFA. RR poly(A)? 纯化 mRNA Fein, FE poly(A) 污染 RNA 进行 电泳 检测 理由 因为 研究 目的 RNA 足够 进行 polyCA) 检测 任何 效率 100% 纯化 poly(A) 步骤 实际 降低 mRNA

核糖 RNA(CrRNA) 细胞 RNA 细胞 RNA 主要 样品 80% 85% 含量 mRNA 含量 (2% 3%)。 即使 mRNA 含量 紫外 检测 样品 标准 方法 需要 确保 特定 mRNA 变化 真实 反映 RNA 转录 转录 调节 情况 RNA ), 检测 变化 意义 基于 含量 标准 方法 需要 考虑

考虑 方面 问题 poly(A)* RNA 存在 7 poly(A) 详细 列举 道中 poly(A)- RNA (484 hnRNA fl mRNA), 接受 标准 样品 方法 实现 利用 RNA、 进行 poly(A)+ RNA 方法 进行 校准 合成 poly(T) 标记 进行 标准 〈Fornace Mitch- ell, 1986; Hollander Fornace, 1990; Farrell Greene,1992) 合成 cDNA 方法 样本 poly(A) 技术 : 进行 标准 校准 少量 RNA (500 ng ) 进行 印迹 斑点 印迹 poly CT) 杂交 结果 反映 样品 poly(A)* 含量 (A 10.1)。 样本 通过 比较 杂交 信号 强度 校准 RNA 使 道中 poly(A) 相等 校准 方法

105

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

a b = d J j 250 == re = & -_-_> 2 125 gee”. “ati di ir, * SS < 3 " ES 5 ws ait 62 Ce -_ ms a : sd 3] * . = 2 a 2 = Es ae pes =. 31 mgs ad F 5 a 3 = me oe . es aes e 4 ea 5. 1

10. 1 印迹 杂交 校准 样品 细胞 RNA poly(A)”。 磷酸 缓冲 500ng(A 260 ) 样品 连续 进行 2 稀释 100k1, ?了 标记 poly(T) 杂交 方法 oligo(dT) 质量 RNA 样品 poly(A)” mRNA, 放射 显影 扫描 光度 测定 结果 表明 含有 RNA 相同

polyC(A)- 2 4 差异

适用 需要 精确 校准 方法 相当 UV 纯化 poly CA) RNA 进行 标准 正确 按照 poly(A) ~ RNA 进行 标准 导致 道中 poly(A) 造成 实验 观测 误差

关于 样品 标准 问题 重要 ,RNA 电泳 Northern 虽然 古老 传统 技术 它们 非常 接近 作为 基因 表达 参数 RNA 测量 方法 指标 。RNA 电泳 Northern 初始 粗略 估计 细胞 ; 基因 表达 精确 需求 研究 使 极其 灵敏 RT-PCR 技术

10.2.1 实验 方案 : poly(A) 标准

(1) 样品 准备 @ 50mmol/L, pH6. 8 磷酸 (50mmol/L Na,H,PO,) 《该 缓冲 混合 制备 10. 1) He 500ng(Axzio)RNA, 缓冲 200p1,

10.1 Na,H,PO, 缓冲 配制

Na: HPO, /ml ugh wep NaH>PO, /ml Na, HPO, /ml 6.5 5.7

NaH? PO, /ml

CO” BSS 2 Se ee ee SCO OND Fw DM HE OC ©

SoS GM O61 OC Ors <i ce

TE: 配制 特定 PH 磷酸 200mmol/L NaH2PO, NazHPO, 理论 比例 测定 NaH2PO, Naz HPO, 混合 稀释 pH 需要 微量 调节 pH 文部 @O 印迹 杂交 斑点 印迹 杂交 (Schleicher Schuell Biosciences), 核酸 湿润 磷酸 平衡 样品 (100p1= 250ng) *。 106 -

10 ik

注意 ”将 样品 集中 面积 定量 数据 斑点 印迹 杂交

@ 100xl RNA 样品 100pl 磷酸 使 稀释 印迹 通常 进行 稀释 样品 足以 样品 进行 精确 校准

® 300pl 磷酸

© 商品 poly(A) 稀释 作为 阳性 使 商品 poly(A) 作为 估计 样品 poly(A)- 标准 倍数 tRNA 阴性

© 按照 厂商 RNA, 紫外 照射 杂交 存放

(2) 1

@a. Church 印迹 (Church Gilbert, 1984): (1% BSA,1lmmol/L EDTA,0. 5mol/L Na,H,PO,, 7% SDS, pH7.2) , 65°C¥E@A 20min. MARRN Re/)\ FABRA 100pl/cm?, HEA RO.

(3) 2

Ob. 5 X SSPE 15min 100pl/cm2 杂交 (5XSSPE, 5XDenhardt 溶液 ,0.1% SDS, 100pg/pl 变性 DNA, 50% AY ARERR). 42°C MA 2 3h。

注意 ”因为 SSPE 磷酸 核酸 磷酸 相似 帮助 封闭 杂交 SSPE 代替 SSC 背景 杂交 〈Lab-Line) 数值

(4) poly(T) 合成

poly(A) 模板 进行 cDNA 作为 实验 poly(T) (100pl) 含有 : 250ng/pl poly(A); 2mmol/L (DTT); 50mmol/L Tris-Cl, pH8.3; 40mmol/L KCl; 10mmol/L MgCl; 0.5U/pl RNa- sin(Promega); lImmol/L dTTP; 0. 05yg/pl AY dTiz~is BK HM; 100nCila** P| TTP (3000Ci/mmol)®; 5U/pl AMV 管用 dTTP dNTP 混合 特异 cDNA,, 任何 cDNA 合成 试剂 进行 200 300bp。 同位 标记 poly(T) 13 方法 合成

© 42C 1. 5h。

d0 100mmol/L NaOH 10mmol/L EDTA 混合 终止 反应 样品 65 保温 20min poly(A) RR.

注意 方法 cDNA 合成 方法 除去 模板 RNA 步骤 相同

@ 室温 pH7.5,. 100mmol/L Tris-Cl 反应 混合 15min,

OQ 需要 标记 放射 反应 离心 进行 纯化 (Sambrook Russel,2001) 样品 Sephadex G-25 (Amersham Biosci- ences), 商品 浓缩 纯化 试剂 使 含有 杂交 缓冲 ) 适当 屏蔽 20C 温度 存放 4 6

@ 虽然 检测 需要 250nCiL35S]TTP 5 -(oS) 标记 。1Ci=37GBq。 107

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

(5) 杂交

BO 杂交 超过 100p)/cm’ 浓度 100ng/ml 1X105cpmy/ml AY poly(T)

© 44C 振荡 3 4h。

(6) AAC WR

© 杂交 结束 溶液 冷冻 保存 使 溶液 使 Church 缓冲 进行 杂交 杂交 1) 200mmol/L NaCl 室温 洗涤 10min; 然后 44°C 洗涤 30min; 75mmol/L NaCl 室温 洗涤 5min。 使 含有 SSPE 缓冲 杂交 方法 2), 2x SSPE, 0.1% SDS 室温 洗涤 10min; 0.1XSSPE、0.1% SDS Bumpy 37°C VER LIK, FEY 10min。 保证 洗涤 充分 洗涤 使 100ml 缓冲

© 除去 洗涤 缓冲 面向 Whatman 3mm 滤纸 20 30s, Fe Ue AR TE.

@ 保鲜 湿 进行 放射 显影 98。 杂交 70C 曝光 便 信号。

注意 AGM. AWWA Cerenkov 计数 稀释 样品 定量 : 稀释 斑点 ) 闪烁 进行 检测

poly(A) 含量 poly(T) 杂交 程度 细胞 RNA 细胞 RNA 根据 样品 进行 标准 校准 情况 样品 样品 标准 RNA 样品 电泳

10.3 ep HBM EK RNAS £47 H

体内 mRNA 形式 细胞 白质 结合 信使 核糖 (mRNP) 颗粒 mRNP 认为 细胞 mRNA 存在 形式 重要 结构 RNA- 白质 相互 作用 互补 序列 形成 结果 认为 RNA 含有 螺旋 标准 A::U G:::C . G :: U 相互 作用 程度 认为 调节 细胞 翻译 (综述 Lewin,2004)。 增加 mRNA 5 暂时 形成 严重 影响 mRNA 翻译 RNA 干扰 (RNAi) 技术 作用 基础 阻止 mRNA 5 末端 翻译 相互 作用 单纯 mRNA, 造成 mRNA 翻译

控制 核酸 电场 迁移 参数 结构 RNA 影响 基于 电泳 RNA tRNA 主要 例子 含有 许多 序列 作为 整体 呈现 特征 容易 识别 拥有 惊人 定性 结构 程度 RNA, 正极 迁移 速度 造成 RNA 转录 电泳 表现 克服 问题 ,RNA 样品 通常 变性 电泳 解决 结构 问题 RNA 电泳 需要

© 检测 方法 15 108

10 ik

44: ORNA 变性 ; @ 过程 支持 维持 RNA 变性 状态 5 问题 电泳 访 结果

选择 变性 系统 主要 取决 实验 目的 变性 选择 RNA 函数 实验 目的 影响 制备 严格 RNA 核酸 500 ) 丙烯 3% ~ 20%) (Maniatis ,1975) Sl 核酸 保护 实验 (Berk Sharp, 1977; Favaloro ,1980; Sharp ,1980) 、RNase 保护 实验 (Zinn ,1983; Melton ,1984) DNA 测序 需要 操作 ,Northern 研究 相同 转录 混合 ,1.0%% 1.2%% 变性 琼脂 达到 电泳 ) 效率

琼脂 常用 RNA 变性 甲醛 @ (Boedtker,1971; Lehrach 1977; Rave ,1979) #12 —#/— AW (DMSO) (Bantle 4, 1976; McMaster Carmichael, 1977; Thomas,1980) 史上 琼脂 RNA 48 PE FA] HERA SE (methylmercuric hydroxide) 系统 讽刺 意味 目前 变性 (Gruenwedel Davidson,1966), 迄今 毒性 FER ECE 综述 Junghans, 1983) 问题 使 使 RNA 变性 酰胺 8 (Spohr ,1976) 尿素 (Reijnders 1973) 变性 系统 讨论 甲醛 / 使 羟基 难度 健康 危害 推荐 使 讨论 使 方法

10.3.1 甲醛 变性

甲醛 常用 RNA 变性 致癌 通风 进行 操作 避免 使 确保 RNA RNA 样品 电泳 必须 甲醛 酰胺 联合 变性 需要 甲醛 维持 状态 储存 浓度 通常 37% (12. 3mol/L), FF BA 10%% 15%% 甲醇 作为 防腐 棕色 室温 保存 避免 阳光 直射 空气 接触 氧化 使 检测 PH ; pH FF 4, RNA 降解 RNA pH 必须 4.0。 酰胺 那样 甲醛 进行 离子 提高 pH 《附录 7)。 杂交 步骤 RNA 完全 除去 变性 实验 甲醛 变性 系统 系统 具有 灵敏 原因 实验 选用 甲醛 变性 系统 RNA 电泳

甲醛 电泳 缓冲 1XMOPS, 10X (400mmol/L MOPS®, pH7.0; 100mmol/L NaAc; 10mmol/L EDTA,pH8.0), 黄色 观点 MOPS 缓冲 影响 作为 电泳 缓冲 功能

@ : 甲醛 致癌 @ 警告: 致癌 MOPS 3-C(N- )- [3-(N-morpholino) propane sulfonic acid],

“fi99 -

RNA 实验 指南 _RNA 研究 方法

r MOPS 缓冲 除去 核酸 活性 储存 硬度 琼脂 10. 8 初次 进行 RNA 电泳 帮助

10.3.2 验方 : 甲醛 变性

© RFE!

@ 配制 200ml] 琼脂 配制 12cmX14cm )。 2.4g 琼脂 170ml 蒸馏 微波 使 溶化 旋转 摇动 确保 琼脂 溶解 琼脂 55 60C 20ml 10XMOPS 10ml 甲醛 (37%%)。 1XMOPS、0. 6mol/L FAR, 1.2%89 琼脂 55 60C 挥发

注意 ”以 操作 使 2. 2mol/L 浓度 甲醛 操作 使 超过 0. 6mol/L 甲醛 需要 0. 22mol/L。

@ @ 配制 溶液 灌注 厚度 0.5 0. 75cm 通风 减少 甲醛 挥发 室内 ,RNA

© 电泳 样品 方案 离心

4.7p1 RNA (RA 20g)

2. Onl 5X MOPS 缓冲

3. 3ul 甲醛

10. Ol 酰胺

充分 混合 离心

注意 1 RNA 超过 20kg, 引起 样品 丢失 降低 RNA 需要 4~5ye poly(A)+ RNA,

注意 2 ”使 离子 甲醛

© 按照 方法 准备 4 5pwg 标准 RNA,

注意 ”这 标准 RNA, 体内 转录 使 需要 变性

© 样品 标准 RNA 55C 15min 65C 10min 变性

© RNA 保温 变性 即将 转移 浸没 1XMOPS 电泳 缓冲

注意 ”要 少量 电泳 缓冲 梳子 垂直 浸入 缓冲 润滑 梳子 真空 作用 没有 缓冲 覆盖 梳子 气压 使 底部

变性 样品 2p] 10X 缓冲 (50% ; lmmolML EDTA, pH8.0; 0. 25% @) 混合 立即

注意 ”样品 变性 保温 ,会 样品 残留 离心 缓冲 离心

@ 缓冲 0.25 电泳 干扰 RNA DNA 观察 甲苯 现象 明显 推荐 使

”110 -

10 HB ik

@ 电极 电压 5V/cm。 迁移 1 2cm 停止 电泳

注意 ”推测 RNA 样品 电泳 实验 估计 停止 电泳 使 目的 RNA

@ 电泳 结束 0. 5wg/ml 溶液 1x MOPS 溶液 ;或 1X SYBR 4 [| #) 1X TAE st 1X TBE 溶液; 1XSYBR 1XTAE 1XTBE 染色 观测 RNA 技术 方法 选择 详细

注意 ”用 染色 甲醛 变性 常会 背景 RNA 模糊 因为 含有 甲醛 橙色 粉色 核酸 因此 模糊 DEPC 蒸馏 5XSSC 脱色 2 3 10min

QD) 管用 什么 方法 需要 SX SSC 蒸馏 甲醛 通常 缓冲 蒸馏 20 30min, 缓冲 充分 甲醛 300ml 蒸馏 ,4C

CD 拍照 保存

10.3.3 /

常规 变性 方法 RNA 样品 1mol/L 50% (体积 ) DMSO 混合 50°C Hei 1h (Bantle 1976; McMaster Carmichael,1977) 〈Salo- maa, 1956) 增加 空间 干扰 G :::C 配对 《〈Hutton Wetmur,1973)。 浓度 RNA fl DNA (Nakaya 1968); - 稳定 (Shapiro F, 1970; Broude Bu- dowsky,1971)。 RNA 方法 排除 甲醛 (HARARE ASR) 身体 潜在 甲醛 系统 需要 电泳 ,RNA 样品 RHE RNA BH. BAZ BH RNA 变性 效果 准备 变性 Northern 麻烦 作者 采用 甲醛 变性 系统

氧化 速度 使 储备 40% CH, 6mol/L) 离子 pH 离子 氧化 产物 使 RNA 降解 片段 使 方便 离子 密闭 20C 存放 融化 离子 使

DNA RNA 电泳 速度 相当 〈(McMaster Carmichael, 1977); 因此 DNA AT AEA A RNA 标准 限制 CPse TL . Poul, Hind Ill) 消化 4361bp 质粒 PBR322, 产生 779bp、1545bp 2037 bp 片段 没有 合适 RNA 标准 片段 非常 克隆 pBR322 pBR322 载体 消化 制备 片段 作为 目标 片段 杂交 放射 产生 永久 标准 影像 9。 方法 Southern 杂交 任何

© 质粒 片段 作为 标准 放射 显影 信号 非常 标准 信号 影响 信号 模糊 目的 照片 标准 建议 超过

25ng,

° TIT -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

DNA 序列 质粒 制备 标准

甲醛 变性 样品 核酸 样品 电泳 速度 锐利 缺点 电泳 缓冲 (10mmol/L 磷酸 ,pH7.0) 缓冲 防止 形成 pH 梯度 RNA 样品 变性 电泳 速度 甲醛 变性 We. TEAR RAB. BAN pH7. 0 缓冲 离子 强度 需要 变性 维持 变性 效果 缓冲 抵抗 溶液 pH 快速 改变 电泳 需要 保证 缓冲 持续 循环 维持 pH. ALA bDH 8.0 RNA (和 DNA) (Thomas,1980), RNA 样品 因此 必要 方便 选择 缓冲 进出 支持 循环 产品 配置 支持 缓冲 循环 麻烦 必须 30min 切断 电源 缓冲 1XMOPS 缓冲 进行 降低 变性 缓冲 循环 10.8 初次 进行 RNA 电泳 帮助

10.3.4 实验 方案 : RNA 电泳

(1) 准备 : 磷酸 缓冲 配制

NaH2PO. (〈 ) Naz HPO4 ) 储备 比例 混合 配制 特定 pH 磷酸 缓冲 10. 1) NazHzPO4 表示 混合 混合

配制 0.2mol/ NaHzPO4 NazHPO4 储备 溶液 10. 1 比例 混合 pH 缓冲 90 体积 稀释 溶液 相应 浓度 校正 溶液 pH 方法 微量 调节 溶液 pH (A: NaH2PO, pH ,Nas HPO4 提高 pH (A. TER: 稀释 磷酸 溶液 调节 pH 0. 2mol/L 储备 溶液 调节 pH

(2) 样品 制备

!

Q 琼脂 溶解 10mmol/L NazH,PO (pH7.0) ( 浓度 1.2%%)。

G@) 溶液 冷却 55~60°C Wt, AE CHE TE Be Al eK 12cm X 14cm

注意 “省 染料 ,SYBR 绿 SYBR

® 微量 离心 RNA 样品 变性 :

3. 7pl RNA 10pg)

2. 7pl 6mol/L 离子 )

8. Onl DMSO. 〔〈 纯度 )

1. 641 100mmol/L Na,H,PO,, pH7. 0

比例 产生 溶液 1Imol/L Z RE. 50% DMSO, 10mmol/L NazH,PO4

© 微量 离心 ,50C 1h。

© 浸入 电泳 缓冲 (10mmol/L Na,H,PO,, pH7.0). # RNA 样品 同时 进行 操作

注意 “要 少量 电泳 缓冲 梳子 垂直

- 112+

| 4

10 ik

缓冲 润滑 造成 真空 没有 缓冲 覆盖 梳子 气压 使 底部

@ @ 保温 结束 样品 温度 20C 2xl 10X 缓冲 (50% 甘油 ; Immol/L EDTA, pH8.0; 0. 25% )。 离心 离心 2 3s, 样品 集中 底部

@ 立即

© 电泳 电压 5V/Vcm。 指示 移动 80% 停止 电泳

注意 “推测 RNA 样品 电泳 实验 ,根据 目的 RNA

@ 尽管 推荐 电泳 结束 直接 Northern 印迹 需要 0. Sug/ml “〈 100mmoLL WARE) 2XSYBR AT G&F 1x TBE 缓冲 ) Bese.

注意 1 检测 潜在 作用 改变 它们 光学 降低 转移 效率

注意 2 30kg/ml ORE CAF DEPC 10mmol/L 磷酸 ,pH7.0) (BREE at SYBR 绿 产生 背景 染色 方法 推荐 使 方法 HEBER 吸收 ) 脱色 1h (McMaster Carmichael,1977) 10~15min 除去 吸附 使 丙烯 酰胺 室温 脱色 2h 4C 脱色 致癌 物质 DNA 结合

@ RNA, 直接 琼脂 尼龙 硝酸 纤维 需要 杂交 RNA 样品 OLB 14 )

注意 “不 浸泡 溶液 环境 降低 转移 效率 降解 RNA, 杂交 检测

10.4 D+ 4

精确 测量 RNA 推测 相当 重要 DNA 5 RNA 核酸 结构 RNA DNA 移动 9。 差异 甲醛 琼脂 明显 (Wicks,1986)。RNA 常规 DNA (Hind 消化 ) ®X174 DNA (Hae 消化 ) 基因 标准 选用 RNA 标准 ,RNA DNA 相同 电泳 速度 (McMaster Carmichael, 1977); DNA 样品 细胞 RNA 范围 相当 标准

制备 RNA 电泳 标准 困难 使 实验 容易 实现 目的 RNA 基本 方法

D 标准 : 同一 样品 基本 商品 。RNA 通常 含有 5 10 体外 转录 RNA 变性 样品 方法 变性 RNA 标准 标准 样品

@ 确实 DNA 作为 鉴定 RNA 标准 400bp FY) BE * 113 =

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

RNA RNase 敏感

系统 4361bp pBR322 质粒 (Pst 1. Pou 1. Hind I) 产物 作为 标准 779bp、1545bp、2037bp 片段

@ 标准 : 实验 样品 RNA rRNA、 rRNA。 这些 标准 样品 准备 电泳 样品

许多 物种 rRNA 它们 它们 参考 管用 标准 RNA 混合 精确 结果 28S rRNA 18S rRNA@ (单独 使 RNA 标准 联合 使 ) 几乎 通用 方法 即使 变性 恰当 RNA 样品 染色 显示 具有 3 较为 模糊 45S rRNA, 28S rRNA 18S rRNA 2 2.3), 它们 细胞 蛋白 相互 作用 功能 核糖

10. 4.1 标准 正确 使

标准 作为 确认 样品 RNA 标准 标准 注意 事项

D 标准

GO 标准

G@) 标准 范围

标准 观测 方法 标记 通过 杂交 检测 )

商标 预制 RNA 标准 具有 特点 : 体外 转录 转录 DNA 模板 完全 干净 模板 常用 质粒 载体 载体 解决 使 标记 杂交 载体 核酸 ;, 使 虽然 载体 载体 序列 虽然 工作 序列 杂交 特异 载体 标准 残余 模板 杂交 避免 杂交 配对 非常 模板 足以 产生 杂交 信号 8。 负面 影响 : 检测 信号 覆盖 模糊

杂交 信号 ;@ 标准 道中 异常 确定 麻烦 理由 相信 产生 信号 标准 实验 样品 使 标准 检测 需要 2ng 标准 产生 信和 才能 拍照

载体 序列 克隆 载体 标准 杂交 道中 4 5pg 样品 足以 产生 拍照 存档 需要 信号 强度 样品 载体 序列 ,15ng 标准 互补 载体 序列 杂交 检测 非常

@ 原核 生物 28S rRNA 18S rRNA 23S rRNA 16S rRNA。 @ 假如 没有 载体 序列 样品 含有 完全 相关 载体 序列 交叉 杂交 现象 pBR322 载体 pBR322 产物 产生 杂交 信号。

"114

10 ik

标准 质量 非常 重要 参数 通常 方式 电泳 实验 明显 知道 哪些 物质 转移 翻转 倒置 ;, 转移 判断 胶原 方向 使 实验 结果 复杂 X 线 显影 结果 产生 影响 标准 样品 差异 明显 消除 方面 笔者 实验 标准 通常 10.2, 标准 10. 2). 实验 AAA RNABEADERBK. BE BRAS ORME 系列 跨度 RNA 样品 (500~10000bp 范围 ) 判断 系统 RNA 实验 样品 范围 选择 非常 非常 标准 精确 判断 特定 RNA

10.4.2 #8 RNA

核糖 主要 60S WHE, NMA 40S BE; “S” {KH Svedberg 单位 描述 速度 生化 术语 含有 特定 rRNA 蛋白 RNA 70 蛋白 rRNA rRNA RNA 继续 纯化 。28S rRNA 18S rRNA 60S 40S 蛋白 5S rRNA 5. 8S rRNA 生物 蛋白 核糖 体内 释放

rRNA 作为 参照

@ 作为 标准

@ 通过 目测 判断 样品 完整

@ RNA 提供 密度 操作 方法 参考 Bonini Hofmann (1991), Correa-Rotter (1992)

因为 rRNA 主要 转录 产物 细胞 RNA 80% 85%), RNA 细胞 RNA 电泳 28S rRNA 18S rRNA。 存在 样品 完整 样品 没有 降解 动物 RNA ,28S rRNA 含量 18S rRNA 2 ; 生物 进化 降低 比例 逐渐 趋向 1 (图 10.3).

除了 28S rRNA 18S rRNA rRNA 间或 弥散 细胞 mRNA 正常 现象 原因 mRNA 细胞 RNA 含量 超过 3%。 达到 RNA 延长 电泳 5S rRNA、5. 8S rRNA tRNA 电泳 边缘 进入 缓冲

115 +

Manta § 汪汪 ES

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Tues 25 345 4-1 SG: 9 Nk B12

10.3 RNA 表达 比较 1.2%% 琼脂 纯化 RNA: CHO-K1 细胞 1~4 5 7~10); BA (S.uvarum) RNA (〈 5 11)。( 1) 离子 溶解 制备 细胞 RNA 尽管 样品 质量 。( 2) 盐酸 - -苯酚 细胞 RNA 质量 hnRNA. ( 3) poly(A)* RNA 样品 降解 。( 4) poly(A)” RNA 质量 ( 5) -苯酚 酵母 RNA 。( 6) 空白 。( 7) 溶解 制备 细胞 RNA 质量 降解 ( 8) 盐酸 - -苯酚 细胞 RNA 质量 hnRNA, ( 9) poly (A)+RNA 质量 28S rRNA 18S rRNA, 样品 完整 ( 10) poly(A)” RNA 质量 。( 11) -苯酚 酵母 RNA 质量 。( 12) Promega 公司 RNA 标准 酵母 28S rRNA 移动 速度 CHO-K1 WER 5 11), 2、4、8、10 hnRNA 45S rRNA

因为 5S rRNA、5. 8S rRNA tRNA 〈300 400bp 范围 ), 它们 作为 细胞 RNA 标准 方法 肯定 推荐 评估 体系 知道 电泳 提高 样品

绿色 植物 RNA, 电泳 动物 细胞 RNA 电泳 除了 rRNA 外, 染色 叶绿体 转录 10. 4) 存在 样品 完整 指标 少量 没有 弥散 RNA 样品 表现 良好 传说 植物 转录 产物 稳定 保存 6 RNA 样品 进行 电泳 确保 完整

oligo(dT) 纯化 poly(A)+ RNA 样品 微量 rRNA 遗留 ) ) 判断 样品 rRNA 事实 样品 完整 回收 polyC(A)+ mRNA 常会 错误 主要 rRNA Ail tRNA AKA poly(A) -组 回收 样品 电泳 rRNA 作为 合适 标准 阴性 poly(A)” mRNA, 使 道中 杂交 信号 非特 异性 杂交 结果 目的 RNA 非常 靠近 28S rRNA, 18S rRNA 特别 重要 作者 按照 细胞 RNA、poly(A)+ RNA 45 poly(A)” RNA 顺序 10.5).

= 116 -

10.4 #446 (Morning Glory) 番薯 植物 (Ipomoea sp.) 细胞 RNA 表达 10ug RNA 样品 50V 电泳 3h。 SYBR 30min。 1: “〈 )。 2: “〔〈 繁殖 ) tik 3: (诱导 ) 4: 子叶 ) 5: 根部 (诱导 ) 6: 繁殖 ) hia 7: 根部 “〈 繁殖 )。 8: RNA (Promega) 1~4 6 除了 含有 28S rRNA 18S rRNA ,还 含有 叶绿体 转录 产物 植物 RNA 共有 RNA 样品 5 27) 含有 28S rRNA 18S rRNA。 注意 RNA 80C 16 质量

10.5 细胞 RNA、poly(A)+RNA poly(A)” RNA 比较 。CHO-K1 细胞 ( 1~4) 酵母 〈S. uvarum; 5) RNA 样品 1.2 琼脂 变性 1: 细胞 RNA 质量 2: 盐酸 - -苯酚 细胞 RNA—— Jim hnRNA。 3 poly(A) ”RNA 质量 微量 rRNA。 4,poly(A)-”RNA 质量 5: 酵母 RNA 质量 6: RNA (Promega) 28S rRNA 哺乳 动物 CHO-K1 28S 转录

RNA 转录 研究

降解 显示 28S rRNA、18S rRNA 稍稍 模糊 mRNA 特征 样品 覆盖 完整 样品 18S rRNA 位置 整个 ASH, A 8.1) 实验 观测 浓密 整个 弥散 ,28S rRNA 18S rRNA 通常 弥散 它们 似乎 正确 。RNA 样品 现象 原因 : @ORNA 没有 变性 ; @ 完全 溶解 缓冲 ,@ RNA 样品 浓度 。RNA 样品 完全 变性 完全 溶解 浓度 RNA 样品 沉淀 足够 蒸馏 缓冲 配置 5xg/pl 溶液 少量 RNA 样品 风干 旋转 蒸发 干燥 没有 重新 @。 另外 根据 特征 检验 RNA。 荧光 信号, 含有 基因 DNA. RNA 使 染色 DNA 片段 电泳 片段 进入 电泳 RNA 样品

@ 65C 15min、 合用 控制 RNA” 维持 样品 完整 确保 重复 途径 RNA 试验 冒险 投入 样品

17

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

DNA 污染 样品 根据 Azeo 测量 进行 定量 准确 基因 DNASE 提供 质量 行为 显示 样品 纯度 理想 使 疑问 样品 进行 任何 问题 程度 剩余 样品 质量 DNA 污染 问题 附录 5 方法 DNase RNase) 保温 消化 解决 问题 使 迷你 判断 RNA 样品 实用 唯一 方法

商品 标准 rRNA 标准 联合 使 28S rRNA 18S rRNA 知识 测量 它们 电泳 移动 距离 直线 需要 合理 标准 曲线 完成 软件 瞬时 测量 宝丽来 相机 拍摄 摄像 拍摄 湿 任何 需要 照片 文档 使 初步 数据 没有 放置 光标 放置 标尺 产生 (如 SYBR 绿 、SYBR ) 使 紫外 线 使 荧光 标尺 现在 照片 (第 5 5.4)。

核糖 RNA 标准 根据 文献 报道 rRNA 知识 知道 研究 生物 品种 rRNA 情况 测量 明智 生物 rRNA, 差异 非常 使 哺乳 动物 28S rRNA, 18S rRNA 差异 18S rRNA 变化 1. 7~1. 9kb 范围 ,28S rRNA 变化 4. 6 5. 2kb @。 补充 工具 染料 通常 作为 样品 电泳 指标 通常 样品 沿 1. 2%% 琼脂 电泳 染料 18S rRNA 甲苯 18S rRNA 500 600bp 聚合 (PCR) 产物 目的 荧光 实验 通常 染料 任何 实际 增加 定量 麻烦

Northern 鉴定 样品 3/4 (12cmX1l4cm) ,RNA 样品 目的 RNA 没有 杂交 精确 测定

测定 标准 提高 数据 . 目的 RNA 基本 原理 确实 ) 整个 范围 完全 线性 线性 仍然 根据 线性 范围 标准 确定 它们 结果 准确 使 标准 保证 标准 目的 RNA 电泳 相近 样品 RNA 线性 范围 作为 标准 同样 电泳 线性 范围 差错 比较 Northern 样品 稳定 气泡 吸水 材料 气泡 降低 气泡 附近 样品 转移 效率 模式 样品 表现 目的 基因 同调 信号 调制 均匀 转移 潜在 目的 序列 方法 帮助 评估 转移 效率

© 印迹 结束 、SYBR 绿 RNA, 核糖 .

@ 28SrRNA 18S rRNA 质量 5025bp 1868bp。 * 118 +

|

10 ik

RNA (应 )

@ 染料 18S rRNA 28S rRNA 检测 转移 效率

@ 假如 转移 染色 仍然 少量 SYBR 绿 样品 结合 紫外 线 手提 紫外 密度 照射 rRNA 样品

RNA 转移

根据 login RNA ) 终点 距离 绘制 校准 曲线 绘制 曲线 确定 直接 观察 RNA 确定 随后 核酸 杂交 产物 测定 现在 工作 特色 数据 绘制 合理 校准 曲线

10.5 @RAS}SRA

10.5.1 RUCK

Wik ZA (EtBr, EB) 广泛 使 染料 使 琼脂 核酸 结构 propidium AYFEMERAA. REACH DNA 结合 没有 特异 ; 4 5bp, (Waring,1965) 现实 核酸 替代 方法 SYBR 绿 SYBR 首选 染料 哪个 步骤 争议 电泳 结束 染色 ; 直接 RNA 样品 染料 降低 废弃 物产 数量 道中 荧光 核酸 配制 1xg/ml 储备 溶液 2pl 18pml RNA 样品 混合

选择 使 染料 使 4 主要 缺点

@ (MacGregor Johnson, 1977; Fukunaga ,1984) 配制 储存 溶液 稀释 操作 必须 非常 缓冲 实验 设备 使 合适 方式 丢弃 4; Lunn Sansone, 1987, 1990).

@ Hieww 1H FE HE MM BY HE BE PA EE EE A BE ah. AB EK RY ok BEE EK 152%% 严重 延缓 研究 进程 理由 增强 电泳 电压 电压 进行 电泳 提高

@ 暴露 普通 光照 暴露 紫外 线 造成 RNA 缺口 RNA 困难 非常 迅速 观察 定量 判断 增加 困难

© 降低 样品 转移 效率 传统 转移 方法 毛细 扩散 《第 12 ), 使 转移 延长 难以 接受 即使 残存 微量 降低 转移 效率 转移

@ ,省 2,7- 氨基 -10- -9- ”119

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

样品 进行 电泳 唯一 切断 电源 观测 电泳 进度 紫外 线 手提 紫外 线 照射 直接 观察 结果 眼睛 皮肤 防护 ) 需要 样品 间距 电泳 电源 继续 电泳

考虑 仍然 选择 使 染料 建议

D 接触 污染 溶液 注射 头等 手套 笔者 实验 污染 微量 注射 15ml 丢弃 放置 废弃 容器

© 通常 配制 10mg/ml HRC ER, DARA Re Bia CR. BAR 储备 微量 离心 储存 4C TRE

@ 缓冲 染色 缓冲 电泳 使 ) 浓度 0. 5wg/ml。

© 电泳 完全 结束 染色 标准 标准 直接 ,Northern 标准 样品 依次 排列 缺点 评估 样品 完整 Northern 印迹 RNA 尼龙 标准 样品 距离

@ 稳定 使 Fa Ba AY Yk BE Be FI) 60C 才能 情况 缓冲 否则 电泳 缓冲 10.6) 结束 忘记 处理 电泳 缓冲

10.6 〈EtBr) 直接 琼脂 影响 样品 阳极 阴极 移动 移出 影响 继续 移出 沿 样品 失去 荧光 强度 样品 质量 低估

500 bp PCR 产物 2 4), 273 bp 227 bp 诊断 片段 ( 3 5), PCR 标准 1 6) (Promega)

© 反应 CD) 单独 样品 融化 琼脂 降低 使 除非 脱色 过程 障碍 甲醛 麻烦 甲醛 染色 充分 脱色 观察 rRNA @ 染色 缓冲 脱色 缓冲 电泳 缓冲 Northern 缓冲 ¢ 120°:

10 ik

Cun 5 X SSPE). @ 确保 染色 缓冲 脱色 缓冲 残余 核糖 核酸 样品 降解

10.5.2 SYBR 绿

SYBR #1 AISYBRAT (FRE) 广泛 使 核酸 染料 DNA Al RNA 购买 染料 10000 X DMSO fig FER. Ih 稀释 1X Tris 缓冲 1XTBE、1XTAE TE 缓冲 稀释 SYBR 绿 pH8. 0 左右 Tris 缓冲 荧光 信号 存在 甲醛 背景 没有 负面 影响 SYBR 绿 样品 结合

尽管 SYBR 绿 许多 明显 优点 10.2), 电泳 结束 样品 含有 SYBR 绿 10.7 制备 SYBR 绿 琼脂 几乎 核酸 波浪 影响 DNA RNA 规则 10.7)。 使 质量 ”生变 质量 测定 测定 极其 困难 实验 浓度 TR. Bae A SYBR 绿 SYBR SYBR 绿 推荐 浓度 进行 ase ar CoRR 试验 没有 满意 结果 实验 ,SYBR 绿 @ 非常 电泳 结束 染色 。SYBR 绿 兼容 需要 常规 乙醇 沉淀

10.2 RUZ HEM SYBR 染料 比较

EB

10mg/ml 10000 X DMSO

工作 浓度 核酸 亲和力 ELH I A BEBE 背景 激发

0. 5 1. Opg/ml

1X Tris 缓冲 (pH7 8) 1XTAE、1XTBE、TE

必须 避免 ,总 电泳 染色

300nm

颜色 粉红 /橙色 绿色 (CSYBR 绿 ) 金色 (SYBR )

激发 诱导 染料 漂白

15 15 60ng DNA(SYBR 4 I ),2ng RNA(SYBR I), 25pg © 5 | ) “CD Ha

pee pet EL) sPOCeE CCD HAWOL) | DNACSYBR @slns RNACSYERAM

变性 2 te EB , 必须 同样 操作

@ 蛋白 相关 染料 : SYPROMA SYPRO A ECRRS SWZ K AER.

¢ 121 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

a =| EB SYBR

废弃 2 活性 活性

费用 染色 5 10min 25~30min

® 照明 提高 SYBR 绿 检测 极限 (Haugland, 1996). FA CCD 照相 激光 系统 代替 黑白 照片 检测 极限

@ 虽然 SYBR 绿 显示 变性 EB 〈Singer ,1999), 书写 ,SYBR RIM SYBR EHF 变性 实验 尚未 进行 操作 结合 染料 DNA。 它们 造成 伤害 变性

@ 装置 (Schleicher Schuell, Cat. No. 448031) 体积 EB (和 SYBR 绿 ) 废弃 滤液 方针 附录 4。

10.5.3 SYBR

SYBR 目前 灵敏 核酸 染料 色素 染料 观察 琼脂 酰胺 RNA、 RNA、 DNA DNA, 灵敏 灵敏 笔者 实验 ,SYBR 标准 302nm 紫外 激光 扫描 装置 联合 使 SYBR 绿 相似 ,SYBR 没有 背景 浓度 染色 30min 左右 [在 柔和 光线 缓慢 50r/min)]。 DNA RNA 金色 荧光 SYBR 绿 ,SYBR 10000 X DMSO 储存 使 1xXxTris 1XTAE 1XTBE 储存 1 使 SYBR 绿 相同 原因 ,SYBR 使 方便 SYBR 绿 系统 SYBR BE MB

10.5.4 GelStar

GelStar (Cambrex BioScience) 荧光 信和 核酸 染料 SYBR % 传统 染料 优势 产物 实验 数据 电泳 结束 笔者 实验 电泳 结束 。GelStar 染色 RNA DNA, 同一 染色 比较 灵敏 GelStar DMSO 10000 iH], Hi FF) pH7.0~8.5 Tris 缓冲 。GelStar 操作 DNA 染料 操作 非常 通过 活性 排放 废弃 4)

10.5.5

非常 灵敏 检测 方法 检测 少量 蛋白 蛋白 方法 灵敏 100 ;, 灵敏 优点 需要 特殊 仪器 直接 Be; 染色 没有 背景 推荐 进行 琼脂 灵敏 固定 丙烯 酰胺 溶性 离子 (Ag’) 覆盖 金属 溶性 金属 沉积 引发 122 -

10 ik

金属 聚集 终于 提供 试剂 直接 使

10.5.6 AY Rete

fi HE BE Le KR FT LS BP SY) BR eA BS BEY EE Cacridine or- ange) Yet (McMaster Carmichael, 1977; Carmichael McMaster, 1980). JA BE RNA 联合 使 作为 细胞 染料 (Kasten, 1967), ABER 细胞 周期 研究 核酸 抑制 作用 没有

显示 颜色 : @ 核酸 磷酸 静电 结合 650nm (Bradley Wolf,1959);,@ 插入 525nm 绿色 荧光 (Lerman,1961,1963) 同一 核酸 橘红 DNA 变性 RNA 绿色 染料 特定 功能 实验 进行 观察 变性 RNA RNA FF. MY WE ER 背景 花费 百倍 努力 进行 切实 脱色 wee

琼脂 30wg/ml PY We REAY 10mmol/L, pH7. 0 磷酸 缓冲 30min。 丙烯 酰胺 浸泡 15min RA. AS RAVER AMEN aA 10mmol/L 磷酸 浸泡 1 2h 进行 脱色 建议 冲洗 20min, 脱色 作用 紫外 容易 检测 0. OS pg 0. lug (Broude Bu- dowsky, 1971; Carmichael McMaster, 1980; Sambrook Russel,2001)

10.5.7

4 (methylene blue) 广泛 科技 ”领域 琼脂 染料 DNA RNA 结合 背景 灵敏 非常 使 显示 DNA RNA 进行 染色 基本 那些 禁止 使 毒性 物质 SYBR) 觉得 它们 昂贵 实验 选用 DNA 样品 染色 流产 公司 基于 染料 生产 染色 效果 许多 ,但 SYBR 绿 SYBR 灵敏

1988 ,Herrin Schmidt 报道 SYBR 核酸 技术 RNA 样品 尼龙 (PVDF) 杂交 使 核酸 染色 方法 优点

@ 直接 观察 RNA。rRNA 标准 TR.

Q wy Ze He El ew ii AS A Fe EY Fi RE BE. CRE AT DA PR UE fe BY FR EC

@ AU, BRBRARE ) 提高 转移 效率

染料 健康 没有 潜在 危害 理工 染料 容易

123 >

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

技术 J 染色 背景 灵敏 染料 Q 样品 降解 纯度 费时 完成 才能

知道 © 染色 完全

简单 染色 校正 光源 照射 使 RNA 紫外 尼龙 染色 RNA 印迹 PH5.5、0. 02%% 、0. 3mol/L Z 混合 3min RNA 直接 RNA 样品 1XSSPE 洗涤 15min 20% 、80% 溶液 浸泡 3 5min, 容易 染料 使 RNA 固定 染色 杂交 0. 2 x SSPE, 0.1% SDS 室温 温和 洗涤 15min, 温和 摇动 直接 RNA PH 当前 实验 染色 虽然 现实 方法

10.6 电泳 安全 问题

选择 电泳 设备 考虑 首要 问题 电源 通电 电源 试图 改装 电泳 电源 差错 操作 工作 严重 危害 电泳 系统 保证 通电 打开 电泳 盖子 设计 接触 电泳 切断 设计 允许 电泳 保证 操作 安全 才能 使 电泳 继续 进行 需要 访 电泳 导线 电泳 配备 电泳 相应 导线 电泳 导线 连接 打开 电源 ; 试图 前, 务必 切断 电源 接头 打开 电源 导线 电源 同时 接触 导线 构成 回路 造成 触电

10.7 维护

电泳 实验 常规 操作 质量 电源 电泳 往往 价值 即使 考虑 危险 维护 损失 痛心 电泳 预防 维护 符合 相关 仪器 电泳 电泳 严格 按照 推荐 方法 进行

电泳 电泳 正确 使 维护 非常 重要 忽视 它们 涉及 实验 安全 问题 作者 程序 检查 电线 电极 生命 危险 电泳 安全 警告 合适 接地 插座 连接 电泳 设计 室内 使 潮湿 电源 湿 插头 完全 使 制造 联系

常见 问题 电源 线 插头 裸露 线 引发 电击 事件 往往 提供 电源 线 低廉 购买 设备 备份 室内 周一 安排 电源 线

124

10 ik

螺母 进行 常规 检查 详细 方法 参见 Landers (1990). 服务 问题 专业

10.8 Z4-LEGBIERBRCKMWON SHS

10.8.1 基本 术语

HERG (casting tray): 电泳 琼脂 固定 移动 必须 胶带 橡胶

HUKAS (BERG) (gel box): 电极 电泳

缓冲 〈loading buffer): 甘油 蔗糖 配置 密度 试剂 样品 样品 密度 帮助 实验 样品 缓冲 缓冲 通常 含有 指示 电泳 行进 /或 缓冲 样品 缓冲 mm “BRIT”.

电源 (power supply): fer ERA kU eM e. PAR i ba, 安全 通电 电泳 电源 插头 插入 才能 打开 开关 潜在 危害 电泳 丰富 实验

电泳 缓冲 〈running buffer) : 电流 电解 使 电泳 缓冲 缓冲 pH 离子 浓度 作用

10.8.2 注意 事项

© 配置 核酸 (RNase) 污染 电泳 仪器 齿 变性 抑制 核糖 核酸 活性 它们 转移 干扰 实验 情况 浸泡 3% AY HzO, 0.5% SDS, 50mmol/L EDTA 使 进行 冲洗 使 DEPC 30%% HzOs 电泳 损害 使 造成 危害

@ 商品 电泳 橡胶 需要 封闭 端的 缺口 附录 13, 13-1) 什么 形式 确保 封闭 避免

@ 微波 防止 引起 琼脂 琼脂 引发 烫伤 琼脂 电泳 缓冲 溶解 5 10min, 降低 沸腾 溢出 操作 意外 溢出 仍然

© 溶化 琼脂 澄清 冷却 逐步 透明 移动

© ACHE TEE BEA 0.5~0. 75cm 琼脂 适应 体积 样品 齿 梳子 容积 齿 lmm、1. 5mm 2mm, BRIE 0.75cm, 转移 效率 降低 使 样品 充分 转移 ;此 脱色 比较 麻烦

© 确保 放置 平面

@ 齿 琼脂 缓慢 匀速

。125 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

直至 整个 表面 覆盖 停止 立即 梳子 侧面 永久 标记 指示 琼脂 这样 统一 整个 实验 方式 保证 厚度 步骤 均一 没有 气泡 仍然 气泡 气泡 边缘

@ 通风 配制 含有 变性 琼脂 减少 接触 健康 隐患

@ 使 齿 电泳 缓冲 齿 气压 造成 影响 底部 破坏 破坏 ,RNA 样品

@ 齿 常会 损坏 底部 电泳 缓冲 润滑 齿 使 松动

@ 体积 电泳 缓冲 完全 覆盖 电流 倾向 , 倾向 穿 缓冲 降低 电泳 速度 记得 检查 边缘 盒子 边缘 结合 产生 倾斜 截面 没有 完全 浸没 缓冲 散热 效应 融化 琼脂 道上 厚度 均一 迁移 (边缘 效应 )

Q 尽量 减少 体积 使 RNA 样品 集中 范围

@ 缓冲 含有 甘油 蔗糖 密度 物质 增加 变性 RNA 样品 使 穿 电泳 缓冲 样品 (图 10. 8) 电泳

10.8 ”微量 样品 Ce

混合 混用 缓冲

样品 RNA 样品 迁移 速度 什么 5 70%% 乙醇 洗涤 RNA 沉淀 理由 幅度 改变 核酸 移动 速率 10. 9)

© 吸取 样品 空气 准备 样品 样品 气体 注入 造成 样品 损失

表明 洗涤 步骤 乙醇 蒸馏 TE 缓冲 需要 重新 沉淀 样品 ,70 乙醇 充分 干燥 除去 残留 乙醇 RNA 样品 含有 稀释 乙醇

@@ 移动 电泳 晃动 缓冲 使 样品

样品 确保 电泳 盖子 触电 事故 确定 使 配套 电泳 电泳 导线 打开 电源 计算 126

10

10.9 RNA 影响 细胞 培养 RNA 样品 纯化 结束 同体 70%% 样品 28S rRNA 18S rRNA 迁移 4 6 迁移 1、2、3 5 离子 强度 必要 RNA 沉淀 进一步 70%% 洗涤

电压 5V/cm。 电泳 方向 国定 确保 电泳 电荷 RNA 负极 正极

CD 观察 终止 电泳 电源 操作 电泳 电泳 导线 同时 操作 导线

QO 电源 使 电压 遗憾 实验 科学 曾经 “在 改善 实验 结果 危险 操作 任何 情况 推荐 A A

10.9 参考 文献

Alwine, J. C., Kemp, D. J., and Stark, G. R. (1977). Method for detection of specific RNAs in agarose gels by transfer to diazobenzyloxymethyl-paper and hybridization with DNA probes. Proc. Natl. Acad. Sci. 74, 5350.

Alwine, J. C., Kemp, D. J., Parker, B. A., Reiser, J., Renart, J., Stark, G. R., and Wahl, G. M. (1979). Detection of specific RNAs or specific fragments of DNA by fractionation in gels and transfer to diazobenzyloxymethyl paper. Methods Enzymol. 68, 220.

Bailey, J. M., and Davidson, N. (1976). Methylmercury as a reversible denaturing agent for agarose gel electrophoresis. Analytical Biochem. 70, 75.

Bantle, J. A., Maxwell, I. E., and Hahn, W. E. (1976). Specificity of oligo(dT)-cellulose chromatography in the isolation of polyadenylated RNA. Analytical Biochem. 72, 413.

Berk, A. J., and Sharp, P. A. (1977). Sizing and mapping of early adenovirus mRNAs by gel electrophoresis of $1 endonuclease-digested hybrids. Ce// 12, 721.

Boedtker, H. (1971). Conformation independent molecular weight determinations of RNA by gel electrophoresis. Biochim. Biophys. Acta 240, 448.

Bonini, J. A., and Hofmann, C. (1991). A rapid, accurate, nonradioactive method for quan- titating RNA on agarose gels. Bio Techniques 11, 708.

Bradley, D. F., and Wolf, M. K. (1959). Aggregation of dyes bound to polyanions. Proc. Natl. Acad. Sci. 45, 944.

¢ 127 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Broude, N. E., and Budowsky, E. I. (1971). The reaction of glyoxal with nucleic acid com- ponents III. Kinetics of the reaction with monomers. Biochim. Biophys. Acta 254, 380.

Carmichael, G. G., and McMaster, G. K. (1980). The analysis of nucleic acids in gels using glyoxal and acridine orange. Meth. Enzymol. 65, 380.

Church G. M., and Gilbert, W. (1984). Genomic Sequencing. Proc. Natl. Acad. Sci. 81, 1991.

Correa-Rotter, R., Mariash, C. N., and Rosenberg, M. E. (1992). Loading and transfer control for northern hybridization. Bio Techniques 12, 154.

Farrell, R. E., Jr., and Greene, J. J. (1992). Regulation of c-myc and c-Ha-ras oncogene expression by cell shape. J. Cell. Physiol. 153, 429.

Favaloro, J. R., Triesman, R., and Kamen, R. (1980). Transcriptional maps of polyoma virus-specific RNA: Analysis by two dimensional nuclease S| gel mapping. Methods Enzymol. 65, 718.

Fornace, A. J., and Mitchell, J. (1986). Induction of B2 RNA polymerase III transcription by heat shock: Enrichment for heat shock induced sequences in rodent cells by hybridization subtraction. Nucleic Acids Res. 14, 5793.

Fukunaga, M., Cox, B. A., von Sprecken, R. S., and Yielding, L. W. (1984). Production of frameshift mutations in Salmonella by phenanthridinium derivatives: Enzymatic acti- vation and photoaffinity labeling. Mutat. Res. 127, 31.

Gruenwedel, D. W., and Davidson, N. (1966). Complexing and denaturation of DNA by methylmercuric hydroxide. I. Spectrophotometric studies. J Mol. Biol. 21, 129.

Haugland, R. P. (1996). “Handbook of Fluorescent Probes and Research Chemicals,” 6th ed. Molecular Probes, Inc., Eugene, OR.

Herrin, D. L., and Schmidt, G. W. (1988). Rapid, reversible staining of Northern blots prior to hybridization. Bio Techniques 6, 196.

Hollander, M. C., and Fornace, A. J., Jr. (1990). Estimation of relative mRNA content by filter hybridization to a polythymidylate probe. BioTechniques 9, 174.

Hutton, J. R., and Wetmur, J. G. (1973). Effect of chemical modification on the rate of renaturation of deoxyribonucleic acid. Deaminated and glyoxalated deoxyribonucleic acid. Biochemistry 12, 558.

Johnson, D. (1975). A new method of DNA denaturation mapping. Nucleic Acids Res. 2, 2049.

Junghans, R. P. (1983). A review of the toxicity of methyl mercury compounds with appli- cation to occupational exposures associated with laboratory uses. Environ. Res. 31, 1.

Kasten, F. H. (1967). Cytochemical studies with acridine orange and the influence of dye contaminants in the staining of nucleic acids. Int. Rev. Cytol. 21, 141.

Landers, T. (1990). Electrophoresis apparatus maintenance. Focus 12(2), 54.

Lehrach, H., Diamond, D., Wozney, J. M., and Boedtker, H. (1977). RNA molecular weight determinations by gel electrophoresis under denaturing conditions: A critical reexamination. Biochemistry 16, 4743.

Lerman, L. S. (1961). Structural considerations in the interaction of DNA and acridines. J. Mol. Biol. 3, 18.

Lerman L. S. (1963). The structure of the DNA-acridine complex. Proc. Natl. Acad. Sci. 49, 94.

Lewin, B. (Ed.). (2004). “Genes VIII.” Pearson Education, Upper Saddle River, NJ.

Lunn, G., and Sansone, E. B. (1987). Ethidium bromide: Destruction and decontamination of solutions. Analytical Biochem. 162, 453.

Lunn, G., and Sansone, E. B. (1990). Degradation of ethidium bromide in alcohols. Bio Techniques 8, 372.

¢ 128

10

MacGregor, J. R., and Johnson, I. J. (1977). Jn vitro metabolic activation of ethidium bro- mide and other phenanthridinium compounds: Mutagenic activity in Salmonella typhimurium. Mutat. Res. 48, 103.

Maniatis, T., Jeffrey, A., and Kleid, D. G. (1975). Nucleotide sequence of the rightward operator of the phage lambda. Proc. Natl. Acad. Sci. 72, 1184.

McMaster, G. K., and Carmichael, G. C. (1977). Analysis of single- and double-stranded nucleic acids on polyacrylamide and agarose gels by using glyoxal and acridine orange. Proc. Natl. Acad. Sci. 74, 4835.

Melton, D. A., Krieg, P. A., Rebagliati, M. R., Maniatis, T., Zinn, K., and Green, M. R. (1984). Efficient in vitro synthesis of biologically active RNA and RNA hybridization probes from plasmids containing a bacteriophage SP6 promoter. Nuc. Acids Res. fad LAS:

Nakaya, K., Takenaka, O., Horinishi, H., and Shibata, K. (1968). Reactions of glyoxal with nucleic acids, nucleotides and their component bases. Biochim. Biophys. Acta 161, 23.

Rave, N., Crkvenjakov, N., and Boedtker, H. (1979). Identification of procollagen mRNAs transferred to diazobenzyloxymethyl-paper from formaldehyde gels. Nucleic Acids Res. 6, 3559.

Reijnders, L., Sloof, P., Siral, J, and Borst, P. (1973). Gel electrophoresis of RNA under denaturing conditions. Biochim. Biophys. Acta 324, 320.

Salomaa, P. (1956). Two volumetric methods for the determination of glyoxal. Acta Chem. Scand. 10, 306.

Sambrook, J., and Russell, D. W. (Eds.). (2001). “Molecular Cloning: A Laboratory Manual,” 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York.

Shapiro, R. Cohen, B. I., and Clagett, D. C. (1970). Specific acylation of the guanine residues of ribonucleic acid. J. Biol. Chem. 245, 2633.

Sharp, P. A., Berk, A. J., and Berget, S. M. (1980). Transcriptional maps of adenovirus. Methods Enzymol. 65, 750.

Singer, V. L., Lawlor, T. E., and Yue, S. (1999). Comparison of SYBR Green I nucleic acid gel stain mutagenicity and ethidium bromide mutagenicity in the Sa/monella/mam- malian microsome reverse mutation assay (Ames test). Mutat. Res. 439, 37.

Southern, E. M. (1975). Detection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis. J Mol. Biol. 98, 503.

Spohr, G., Mirault, M. E., Imaizumi, T., and Scherrer, K. (1976). Molecular-weight deter- mination of animal-cell RNA by electrophoresis in formamide under fully denaturing conditions on exponential polyacrylamide gels. Eur. J. Biochem. 62, 313.

Thomas, P. S. (1980). Hybridization of denatured RNA and small DNA fragments trans- ferred to nitrocellulose. Proc. Natl. Acad. Sci. 77, 5201.

Waring, M. J. (1965). Complex formation between ethidium bromide and nucleic acids. J. Mol. Biol. 13, 269.

Wicks, R. J. (1986). RNA molecular weight determination by agarose gel electrophoresis using formaldehyde as denaturant: Comparison of RNA and DNA molecular weight markers. Int. J. Biochem. 18, 277.

Zinn, K., DeMaio, D., and Maniatis, T. (1983). Identification of two distinct regulatory regions adjacent to the human f-interferon gene. Cell 34, 865.

(fe SALW, SHFR)

- 129 -

Eee

11 文档

11.1 基本 原理

精确 保存 实验 记录 结论 数据 非常 必要 实验 结果 精确 关键 信息 数据 常常 暗示 科学 试验 解释 获得 信息 实验 设计 非常 价值 保存 显示 核酸 染料 甚至 扩散 照相 方法 记录 电泳 结果 记录 任何 通过 杂交 获得 X 射线 胶片 结果 放射 显影 ) 稳定 便于 进一步 范围 杂志 唯一 方法

研究 记录 同类 广泛 认可 系统 主要 : 胶片 《人造 偏振 ) 显影 传统 照片 ; X 线 数字 包含 信息 储存 依赖 电脑 /或 磁盘 方法 文中 进行 介绍 生物 实验 装备 数字 端的 系统 价值 美元 普通 实验 通过 简单 装备 数码 相机 使 适当 防护 装置 获得 电子 照片 文档

11.2 照片 文档

传统 意义 照片 文件 研究 电泳 染色 通常 通过 宝丽来 (Polaroid) 即时 实现 照片 文档 系统 广泛 运用 宝丽来 DS-34 手提 相机 CAL 11. 1) 老式 宝丽来 MP-4 功能 系统 ,DS-34 系统 低廉 广泛 设备 获得 实验 记录 合适 注释 宝丽来 即时 开发 装备 数字 常会 配备 打印 设备 使 研究 获得 完整 系统 进行 数字 照片 打印 老式 传真 通过 激光 打印 打印 普通 早期 许多 改进 印刷 仍然 缺少 足够 清晰 实验 使 光泽 保存 电泳 需要 相当 预先 投资 | - 130 -

11 照片 文档

操作 提供 速度 使 效率 提高 * .tif 格式 作为 email 附件 送出 直接 Word 便于 远程 交流 合作 照片 根据 需要 进行 扫描 归档 照片 打印 照片 寿命 选用 方法 打印 实验 记录 备份 重要 便利 问题 因此 电泳 拷贝 存储 打印 非常 必要 节省 完成 步骤 快捷 方便 。@ ;@ 操作 系统 ; @ 软件 轿 找到 储存 ;

实际 教训 : 非常 工具 保存 复印 同样 重要 实验 ,数字 保存 归档 电脑 硬盘 生成 当天 打印 复印 实验 记录

11.2.1 样本

传统 通过 标准 宝丽来 胶片 获得 黑白 彩色 底片 没有 底片 通过 使 CCD 设备 ) 照相 直接 湿润 捕获 使 STORM 860 荧光 (Amersham Biosciences) 激光 扫描 扫描 生成 显示 核酸 使 SYBR 绿 、SYBR 染料 染色 放置 紫外 激发 照相 (图 11. 2) 通过 扫描 获得 照明 紫外 激发 ) 提高 灵敏 。DNA a RNA 数字 系统 简单 宝丽来 照相 快门 记录 进行 核酸 相对 比率 统一 手动 聚焦 缩放 功能 使 研究 整个 显示 选取 使 胶片 调整 便 角度 拍照 容易 使 照相 维持 正确

获得 清晰 电泳 sreearemen 分析 调节 快门 速度 光圈 11 2 线 “小 控制 曝光 使 确定 系统 参数 检查 核酸 照相 适合 “正确 使 //8 光圈 曝光 0. 5s 获得 拍摄 平稳 放置 照射 “EB 染色 进行 修正 美妙 宝丽来 照相 SYBR 绿 SYBR 染色 选择 .131 .

11.1 宝丽来 DS34 照相 适合 使 照相 迅速 聚焦 镜片 保证 准确 放大 倍数 焦点 距离

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

0. 5s 快门 f/5. 6 光圈 拍照 主要 依靠 核酸 紫外 线 紫外 线 诸多 因素 直接 相关 功能 功能 提高 亮度 获得 同时 整合 根据 操作 需要 整合 理解 整合 概念 获得 许多 细节 难以 捕获 ) 获得 透明 层次 ; 然后 层次 整合 方法 原本 模糊 细节 清晰 作者 透明 足够 清晰 提高 透明 背景 必须 适度 使

笔者 观察 错误 : 具有 比较 PCR 产物 相对 进行 20 整合 进行 5 整合 比较 完全 错误 同一 电泳 直接 互相 定量 标准 标记 标准 相互 比较 常用 比较 信和 同一 比较

11.2.2 色彩

除非 非常 明显 传达 详细 信息 电泳 照片 黑白 胶片 适当 必要 需要 注意 SYBR 绿 SYBR 染色 彩色 电泳 非常 忽略 照相 镜头 使 胶片 差异 提高 细节 使 电泳 清晰 锐利

吸收 颜色 传递 自身 颜色 作者 调控 色彩 相对 亮度 显示 使 绿色 使 红色 明亮 方法 互补 选择 正确

“Red Cadillac by General Motors” (通用 汽车 公司 生产 红色 拉克 )

确切 :

Red Cadillac: Red and Cyan 青色 )

by: Blue and Yellow (〈 黄色 )

General Motors: Green and Magenta 绿 洋红 )

11.1 常用 核酸 蛋白质 电泳 染料 8, 相对 效果 合适 光圈 快门 速度 吸光 必要 确保 进行 合适 使 单一 形式 光源 照射 紫外 灯泡 需要 专业 情况 作者 需要 增加 曝光 间或 使 光圈 同时 增加 补偿 产生 影响 紫外 线 @ 比较 相当 适合 照明 拍摄 运用 根据 获得 精确 参数

@ 针对 染料 彩色 照片 使 108 宝丽来 彩色 胶片 黄色 ; 针对 黑白 照片 使 105 107 胶片 红色 @ 注意 : 尽管 UV 光源 光一 比较 没有 保护 措施 短波 辐射 辐射 快速 没有 保护 眼睛 皮肤 永久 损伤 操作 UV 保护 眼镜 避免 皮肤 暴露 紫外 线 - 132 +

4

11 照片 文档

11.1 常见 电泳 染料

光源 (波长 ) ye 快门 速度 @/s UV® (302nm) WALZ BE 22 SURG am 15 SRB f/8 1/4

UV(302nm) SYBR 绿 ,SYBR &

13 (400~ 700nm) ue

H36(400~700nm) ELISA®

JO ELISA 免疫 吸附 测定

QUV 外线

@ 根据 宝丽来 667 57 胶片 〈ISO 3000) 使 光度 胶片 需要 曝光 间或 光圈 尽管 需要 整合 整合 依赖 捕获 设备 同样 使 装置

11.2.3 安全

紫外 线 CUV transilluminator) 手持 紫外 危险 辐射 仪器 紫外 射出 302nm 312nm 紫外 线 254nm 紫外 波长 紫外 线 ) 照射 眼角 眼睛 结构 皮肤 造成 严重 伤害 积累 短期 紫外 灾难 操作 手套 使 使 保护 紫外 线 尽管 紫外 线 透射 保护 常情 阻挡 线 照射 同时 少量 紫外 线 适当 遮光 使 紫外 线 潜在 健康 安全 隐患

紫外 线 透射 拍照 通常 完全 笼罩 手持 照相 遮光 紫外 照相 迅速 打开 照片 迅速 关闭 曝光 胶片 相机 取出 关闭 紫外 常会 关闭 紫外 操作 实验 紫外 线 造成 伤害 事情 室内 透射 仪表 暴露 面积 操作 伤害 整个 透射 表面 覆盖 保护 仪表 适当 保护 需要 注意 安全 玻璃 什么 目的 使 紫外 透射 使 使 合适 安全 防护 设备 非常 必要 染料 接触 DNA RNA 结合 染料 通常 明显 导致 基因 突变 获得 照片 文件 同时 错误 估计 低估 潜在 危险 因素

幸运 相关 设计 保证 紫外 线 透射 工作 遮光 完全 关闭 情况 打开 巧妙 紫外 线 操作 照射

11.2.4 优化 电泳 些小 技巧

O 使 DS-34 照相 接近 XS, WREAK AIEEE (4 15cmX15cm) 拍摄 比较 7cmX8cm), 。133 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

邮票 周围 背景 合适 灵敏 方面 提供 细节 便于 目的 放大

@O) 使 紫外 选择 光敏 程度 胶片 使 ISO 3000 胶片 宝丽来 667 57 胶片 胶片 适用 常规 感光 胶片 锐利 使 曝光 曝光 同时 使 旧式 紫外 操作 紫外 减少 伤害 染色 紫外 比较 颜色 曝光 利于 获得 避免 DNA BK RNA 照射 导致 磷酸 断裂 回收 克隆 进一步 操作 因素 非常 需要 注意 使 少量 紫外 照射 导致 DNA RNA 磷酸 断裂 确保 足够 Northern Southern 断裂 导致 进行 核酸 杂交 又。

@ 保持 照相 清洁 避免 污点 操作 产生 缺陷 使 温水 棉签 (Kimwipes) 定期 清洁 DS-34 照相 照片 污点 甚至 污点 非常 必要 (图 11.3)。 污点 照相 取出 产生 残留 碎片 造成

®D 保持 紫外 线 仪表 清洁 照片 立即 透射 仪表 常会 那里 透射 表面 遗留 透射 荧光 燃料 拍照 产生 背景 污点 使 使 棉签 离子 70 酒精 透射 表面 立即 使 拍摄 什么 背景 By. © 按照 胶片 显影 指导 密切 注意 同类 胶片 推荐 使 显影 程序 温度 问题 常会 导致 质量 常用 黑白 胶片 需要 相机 取出 显影 30s。 显影 提高 影响 取决 深浅 增加 突出 11.4)。 背景 相同 观察 相应

11.3 宝丽来 相机 影响

11.4 宝丽来 电泳 。a. 正确 显影 ; b. 显影 导致 亮度 缺失 134 -

11 照片 文档

@ 数码 相机 设置 标准 保持 特别 注意 光圈 快门 速度 同一 实验 需要 保持 意义

© 避免 极端 温度 胶片 理想 显影 温度 室温 21 24C 果实 胶片 使 冰箱 冷藏 必要 显影 间或 曝光 适当 调整 胶片 使

@ 使 比较 光圈 光圈 获得 景深 锐利 Hie Lik, MAM F/16 光圈 开始 调节 光圈 直到 合适 常情 染色 £/8 光圈 曝光 1/4s, SYBR # £/5. 6 光圈 曝光 1/4s 1/2s$, 需要

@ 尽量 减少 相机 抖动 使 感光 胶卷 获取 染色 SYBR 绿 SYBR 染色 需要 曝光 尽量 减少 相机 抖动 使 快门 释放 代替 手枪 快门 释放 按钮 手提 DS-34 相机 容易 使 感光 胶片 参见 ) 通常 需要 考虑

@ 排除 环境 光源 使 手提 照相 确保 照相 遮光 直接 放置 光合 上, 避免 背景 使 照相 需要 关闭 房间 光源 获得 立刻 关闭 紫外 线 使 情况 线 透射 安全 完全 关闭 打开 保护 操作 避免 紫外 线 照射 避免 环境 光源 感光 胶片 干扰

@ 使 正确 作为 照片 文件 系统 颜色 增加 电泳 作者 使 玻璃 扭曲 光路 使

避免 镜头 透射 表面 打开 液体 挥发 聚集 照相 遮光 镜头 使 镜头 影响 获得 照片 质量 使 镜头 轻易 避免 情况

@ 正确 获取 胶片 照片 直接 照相 取出 平缓 垂直 操作 方向 取出 照相 取出 胶片 作者 “Pol-ar-oid” 节奏 胶片 取出 推荐 显影 胶片 翻转 胶片 数字 胶片 充满 显影 胶片 667 需要 开始 轻微 4 5min 触摸 底片 底片 依附 薄片 含有 皮肤 接触 物质

© BAEWA “BL 1, 2. 4, 8. 16. 32 642 SRARITREHAE. “B” eA 操作 快门 松手 代表 快门 速度 倒数 2 代表 1/2s, 4 代表 1/4s)

@ 术语 光圈 /stop 表示 镜头 快门 参数 进入 镜头 使 胶片 曝光 。J/stop 刻度 标的 数字

135 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

相反 数字 11.2.5 照相 技术 射线 胶片 固有

照相 系统 方法 转换 利用 光子 敏感 记录 光源 物体 反射 光子 光子 足够 吸收 潜在 金属 接受 光子 没有 足够 速度 正确 记录 事件 接受 光子 卤化 反应 正常 情况 反应 正确 记录 事件

临界 使 胶片 金属 饱和 临界 曝光 记录 信息 使 特征 保持 同一 曝光 宝丽来 胶片 饱和 D-Min 晶体 达到 光子 吸收 平时 生成 潜在 片上 没有 吸收 光子 产生 密度 D-Max 统一 反映 D-Min D-Max 范围 晶体 线 方式 记录 阴影 细节 范围 晶体 接近 线性 变化 记录 吸收 胶片 阴影 进行 范围 胶片 动态 范围 管理 希望 胶片 光子 相同 范围 系统 记录 逼真 通常 情况 范围 胶片 动态 范围 情况 操作 必须 选择 哪个 范围 重要 作者 通过 调整 系统 曝光 记录 范围 损失 动态 范围 阴影 实验 需要 显示 使 光圈 同一 2 3 获得 数据

11.3 数字

许多 传统 解读 ) 方法 使 视觉 观察 密度 计量 方法 计算 快速 重复 进行 - 测量 方法 实现 自动 ,包括 测算 综合 〈IOD) 计算 作为 存储 手段 通常 完整 设备 齐全 系统 。FOTO/Analyst Archiver Eclipse 工作 11. 5) 例子 单独 购买 使 仪器 ,Gel-Pro (Media Cybernetics) 杰出 代表 (图 11.6)。 使 简单 操作 信息 需要 使 电脑 软件 自动 操作 诸多

a - 输入 完全 11.5”FOTO/Analyst Archiver Eclipse 工作 ”要 自动 功能 。FOTODYNE 授权 (www. fotodyne. com) BPE.

136

11 照片 文档

Pa

1D-Gel

11.6 使 Gel-Pro Se ae aie Meida Cybernetics 免费 提供 (www. mediacy. com)

意义 理解 基本 术语 知道 文档 数据 方法 实践 需要 注意 事项 物体 表现 利用 信息 使

使 电脑 进行 特殊 简单 定义 进行 定量

数字 利用 平方 方向 线 许多 格子 格子 “图 像素 11.7)。 电脑 通过 数字 表现 像素 1/300in? (lin? = 6.4516 X 10-4m2 ) 像素 根据 表示 〈z )

像素 0, 0

像素 18, 22

11.7 像素 。Media Cybernetics 授权

〈y ) 数值 惯例 通常 左上 作为 0,0“〈 0, 0)。

电泳 照片 ) 数字

形式 进行 像素 独立 样本

像素 亮度 独立 定量

单个 像素 亮度 测量 数值 整数 ) 代表 那个 亮度

作为 代表 像素 储存 电脑 通过 仪器 选择

空间

sm SEO 像素 宽度 通常

依赖 硬件 测量 复杂 ,1 32 比特 任何 存储

¢ 137 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

像素 包含 黑白 信息 简单 像素 单独 比特 代表 : 0= ,1 照片 信息 需要 24 比特 代表 彩色 颜色 使 比特 代表 像素 数值 涉及 像素 像素 比特 (BPP), BPP 数量 决定

尽管 比特 显示 单一 颜色 显示 存在 颜色 颜色 解释 (bit depth) 决定 包括 : 8; 12; 16.

像素 代表 亮度

en PT TettiLtet Ll ae is i ee it Tt 5 (monochrome) , 8 比特 Seseeesnecnsneeecceenseecesesses (th, (iy 0 像素 255 ROGERNORRSE 像素 11.8)。 127

”像素 恰好 灰色 )。 64 像素 恰好 颜色 深度 2、4、6、12、16 32 存在 ,8 BPP 常用 因为 : D1BPP 使 便于 使 电脑 ; @ 256 使 忠实 表现 任何 e。

提高 质量 获得 信息 必要 方法 提高 质量 调整 亮度 校正 常用 方法

亮度 描述 参数 亮度 增加 像素 增加 像素 接近 255; 像素 接近 白色 亮度 降低 像素 减少 像素 接近 0; 像素

表示 暗部 参数 含有 像素 狭小 范围 例如 像素 100 140 55, 比较 包含 像素 比较 使 强度 动态 范围 《dy- namic range) 具有 范围

校正 提高 特殊 形式 提高 特别 特别 | AEP BI. CE BAIA. esc 原始 像素 9) 影响 (255) 阴影 11.9 7y 曲线 曲线

像素 (O~255) 影响 (0) 校正 改善 表现 补偿 | 输入 输出 设备 导致 同一 标准 线性 y 曲线 强度 11. 9) 。7y 1 表示 影响 标准 曲线 y O>1) 使 增加 暗部 y (Y<1) 导致 整体 增加

ee oe oe oe

Y BOER RFA

@ 200 138 -

11 照片 文档

Lt BE Fa BR FF HABE HBR i SE HBR PE: BE PT HE BE COD, BY 4d 36 76 BED 普遍 处理 通过 测量 穿 测定 材料 物质 含量 普遍 使 方法 测量 物质 方法 物质 光照 获得 意义 OD 物质 通过 公式 :

logLintensityCz,y) blackj 0 incldent black

AH OD(Cz,y) 表示 像素 (z,y) ; intensity(Zzyy) 表示 像素 (zy,y) HEE; black 没有 物质 产生 亮度 ; incident 拍照 激发 产生 亮度

物体 OD, 物体 0 OD, 因此 ,OD 强度 相关 OD 像素 OD 像素 OD 比较

IOD 指使 定义 域内 像素 像素 背景 特定 域内 增加 斑点 亮度 使 IOD 增高 比较 没有 标准 ,IOD 非常 参数

11.3.1

数字 储存 电脑 硬盘 CD 需要 进一步 研究 因为 数字 占据 硬盘 空间 损坏 数据 情况 裁减 存储 硬盘 具备 特定 格式 ”由 支持 储存 需要 压缩 程度 变化 通常 TIFF 格式 (*.tif) (tagged image file format, 格式 ; tagged information field format, 信息 文本 格式 ) 保存 存储 : BMP (bitmap, {i )、JPEG Goint photographic experts group, 合照 )、GIFE (graphics interchange format, 格式 ) 存储 硬盘 文件 恢复 传输 通过 电子 邮件 传递

11.3.2 实践 需要 考虑 问题

工作 首先 考虑 问题 系统 软件 花费 问题 奇怪 功能 系统 系统 运行 硬件 设施 仪器 价格 差别 建议 设备 齐全 非常 功能 系统 选择 系统 非常 昂贵 实验 预算 方法 仪器 共享 直接 实验 电脑 购买 花费 需要 投资 购买 捕获 设备 扫描 宝丽来 照片 扫描 、CCD 照相 〈frame grabber) 优点 足以 价格 11. 2)

- 139 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

11.2 优点

行使 标准 测量 方法

使 实验

节省 ,增加 效率

提供

提供 亮度 背景 校准

补偿 单一 背景

计算 IOD,、 .同一 道上 质量 , 计量 容易 错误 Excel 常用 软件

通过 e-mail LA TIFF 格式

数字 导入 Word 文档 Power Point 文档 非常 容易

@ 方面 特别 重要 倾向 放射 显影 胶片 积分

使 主要 优点 使 枯燥 操作 实现 自动 寻找 质量 使 诸如 手工 校准 曲线 决定 质量 密度 计量 方法 减少 实验 室内 错误 提高 需要 实验 工作 效率 质量 X 射线 胶片 方法 获得 完全 兼容 完全 斑点 印迹 形式 信号。 除了 芯片 “〈 23 ) 广泛

改善 质量 使 必须 意识 电泳 没有 进行 足够 进一步 分析 使 必须 提供 质量

背景 校正 争议 领域 整个 进行 精度 定量 重要 方面 难点 因为 背景 相同 存在 背景 梯度 主要 解决 途径

D 检查 许多 ”背景 )。

@ 指针 位置 背景 作为 样本 进行 综合 背景 扣除

© 许多 放置 指针 接近 道上 背景

方法 方法 提供 精度 通用

固有 研究 需要 考虑 同一 真实 差别 255 像素 含有 255 像素 达到 饱和 255 像素 增加 曝光 增加 像素 达到 饱和 曝光 导致 像素 超过 255。 饱和 像素 计算 没有 饱和 像素 常会 使 计算 计算 包含 饱和 像素 定量 方法 需要 数字 系统 进入 饱和 范围 提醒 操作 使 操作 调整 避免 “饱和 导致 错误 统计 ”。

140

|

11 照片 文档

11.4 & 4X“

Baxes, G. A. (1988). “Digital Image Processing-A Practical Primer,’ Cascade Press, Denver, CO.

Baxes, G. A. (1994). “Digital Image Processing-Principles and Applications.” John Wiley & Sons, New York.

Castleman, K. R. (1996). “Digital Image Processing.” Prentice Hall, Englewood Cliffs, NJ.

Chellappa, R. (1992). “Digital Image Processing.” IEEE Computer Society Press, Los Alamitos, CA.

Gonzalez, R. C., and Wirtz, P. (1987). “Digital Image Processing.” Addison-Wesley, Reading, PA.

_ Media Cybernetics. (1996). In “Gel-Pro Analyzer Reference Guide,” 2nd ed. Media Cybernetics, Silver Spring, MD.

Pratt, W. K. (1991). “Digital Image Processing,” 2nd ed. John Wiley & Sons, New York.

Russ, J. C. (1995). “The Image Processing Handbook.” CRC Press, Boca Raton, FL.

(ALM; HLH)

- 141 -

#2128 Northern 印迹

12.1 基本 原理

RNA Northern (Alwine ,1977,1979) 问世 变化 形式 。Northern 核心 电泳 RNA 转移 印迹 (blotting) 便 特定 若干 杂交 转移 RNA 电泳 完全 Northern 杂交 信和 研究 样品 表达 模式 定性 信息 RNA MBER ESI LA, RNA 相对 提高 检测 灵敏 。Northern 样品 培养 细胞 RNA, 评估 mRNA 常用 技术 现在 提取 RNA、 变性 琼脂 核酸 方法 必须 考虑 实验 选择 方法 : 方法 方式 配方 检测 方法 选择 避免 实验 意外 情况 动手 步骤 益处 。Northern 优化 步骤 改变 实验 确立 优化 步骤 技术 困难 重复 问题 解决 那么 Northern 哪些 ? RNA 电泳 转移 固定 然后 标记 DNA RNA 检测 结果 “Northern” ix 术语 幽默 DNA 电泳 印迹 技术 “Southern”, 技术 E. M. Southern 〈Southern,1975) 章节 描述 RNA 提取 方法 怎样 选择 转移 技巧 固定 核酸 方法 章节 ~ 讲述 杂交 检测 方法

12.2 选取

Northern RNA 需要 重要 决定 选取 固体 支撑

便 通过 电泳 RNA 杂交 转移 选择 取决 问题 :

支撑 核酸 结合 转移 方案 固定 方法 表现 差异 考虑

手段 放射 ), 适合 检测 手段

RNA 往往 意味 消耗 努力 工作 研究 142 -

#128 Northern 印迹

反复 杂交 RNA。 检测 杂交 印迹 处理 详细 滤纸 制造 提供

预先 实验 相配 核酸 印迹 常见 方便 尺寸 3m 明治 方式 保护 作用 生产 厂家 商品 任何 标记 避免 油脂 妨碍 正常 湿 ), 核酸 结合 系统 核糖 核酸 (RNase) 污染 RNase 核酸 印迹 实验 购置 手套 手套 粉尘 导致 背景 模糊 储存 干燥 使 冷冻 受热 稳定 保存

12.2.1 硝酸 纤维

RNA 印迹 技术 使 (DBM 纤维 ) 固定 核酸 〈Al- wine ,1977) 使 硝酸 纤维 使 核酸 固定 硝酸 纤维 基础 严格 参数 需要 离子 强度 转移 提高 (RNA 变性 DNA) 结合 印迹 硝酸 纤维 0. 45pm 孔径, 当然 0. 22um 孔径 核酸 实验 使 硝酸 纤维 进行 核酸 印迹 特性 使 使 合意

J 硝酸 纤维 结合 核酸 80~100pg/cm?)

@ 核酸 1000 ) 结合 PCR 产物 印迹

QO) 硝酸 纤维 微弱 电荷 离子 强度 转移 缓冲 20XSSC 20XSSPE 缓冲 9。

® 需要 真空 80C 硝酸 纤维 固定 核酸 真空 潮湿 干扰 固定

@) 固定 核酸 必需 使 硝酸 纤维 需要 极度 使 操作 显得 困难

© 牢固 导致 重复 杂交

@) 硝酸 纤维 使 同位 方法 背景

脆弱 特性 动人 增强 硝酸 纤维 Optitrans (Schleicher Schuell,1987)。 拥有 保留 硝酸 纤维 特性 普通 硝酸 纤维 结实 剧烈 操作

12.2.2 Exe J He HR es A TS WR AF AE FRAY LE AS A Por a OM BS Te HE. ELE AC LK BR EI a BRE

@ SSC, saline sodium citrate, #f RAR AYE PEER 7K. 20 SSC: 3mol/L NaCl, 0. 3mol/L tf ee ARGH. pH7.0. SSPE, saline sodium phosphate-EDTA, ®@% &@ #4-EDTA 生理 盐水 。20 X SSPE: 3mol/L NaCl, 0.2mol/L NaH»PO, - HoO, 0.02mol/L EDTA, pH7. 4.

- 143 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

取代 硝酸 纤维 突出 优点 强度 使 操作 自如 重复 杂交 实现 商品 尼龙 实验 广泛 使 : 表面 电荷 尼龙 66; 电荷 修饰 nylon( )。 硝酸 纤维 印迹 尼龙 0. 45m 孔径 0. 22m 孔径 nylon (+) 使 硝酸 纤维 结合 核酸 提高 结合 核酸 400 500ng/cm” 取决 研究 缓冲 核酸 (500bp) 特别 吸附 PCR 产物 常规 印迹 硝酸 纤维 转移 缓冲 强度 5XSSC 5XSSPE。 nylon( ) 增加 目标 RNA 静电 吸附 杂交 《〈 ) 充分 封闭 背景 信号 杂交 导致 背景 电荷 具有 负电 磷酸 骨架 非特

尼龙 使 使 研究 操作 自由 使 紫外 固定 核酸 尼龙 需要 真空 维持 65 ~ 70°CUA EE 1.0~1. 5h 仪器 尼龙 重复 杂交 方面 硝酸 纤维 报道 尼龙 接种 (Pitas,1989) 笔者 实验 尼龙 增加 背景 仔细 塑料 X 射线 片上 裂纹

12.2.3 BROAZ eB

(PVDF ) 聚合 Western 杂交 偏好 使 报道 Northern Southern 商品 PVDF 稳定 0. 45pm。 线 “〈 真空 ), 使 核酸 PVDF FRE. PVDF 适用 同位 方法

12.3 准备

需要 才能 锋利 剪刀 手术 合适 尺寸 电泳 相对 ), 保留 便 马上 储存 意外 RNase DNase 污染 需要 干净 托盘 预先 湿 5min, 缓冲 笔者 实验 专用 Northern 托盘 托盘 双氧水 洗刷 分钟 冲洗 才能 使 湿 方法 使 《〈 DEPC )。 接触 瞬间 立即 白色 灰色 强烈 使 方法 立即 任何 裸露 不当 损坏 均匀 湿 方法 湿 忽略 确认 问题 晃动 托盘 使 溶液, 浸泡 2min。

湿 转移 转移 缓冲 托盘 快速 平衡 30s 足够 使 转移 缓冲 注意 湿 顺序 重要 : 首先

144 -

#128 Northern 印迹

转移 缓冲 直接

12.4 Northern $4 p@ 46 A

= Be TEM Ee GE RNA 手段 方式 电泳 RNA ABE IBC HE 固体 支撑 选用 技术 RNA 必须 干净 电泳 使 合适 达到 结果 理想 转移 同时 适用 Northern Southern

12.4.1 毛细

方法 传统 Southern 技术 (Southern, 1975) 使 方法 费时 方法 材料 纸巾 印迹 池子 转移 缓冲 通过 纸巾 转移 缓冲 穿 纸巾 ,RNA 样品 杂交 传统 毛细 需要 印迹 12. 1 方法 通常 缺点 : 转移 效率 ; 转移 耗费 效率

S0ug

纸巾

Whatman 4 ee

wh a eee

so

12.1 RNA 变性 琼脂 典型 装置 。(a) RNA 穿 整个 (b) 视图 Parafilm 相交 吸水 滤纸 Parafilm )。 Parafilm 杂交 东西

© RUE.

@ BER PHAR ME at 1.2%.

@ FEIN RBA SIRE. MIA TE AVE BLE CTL FAB HE AR EIR EZ HE 染色 方法 )。

充分 浸泡 除去 甲醛

@) 没有 紫外 照射 磷酸 骨架 转移

@) 转移 需要 16h

145 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

ere Zo _ ae Li yh GB002 4 琼脂 杂交 tae GB002 GB002 GB004 VA ZL mei FF * 预先 转移 缓冲 湿润

12.2 涡轮 印迹 转移 翻转 毛细 装置 利用 重力 因素 转移 缓冲 移动 提高 转移 效率 底下 缓冲

@ RNA 开始 转移 降解 了, 这样 杂交 信和

@ 情况

快速 转移 技术 广 技术

涡轮 印迹

涡轮 印迹 (TurboBlotter ) (Schleicher &. Schuell, Keene, NH) [In] F #AR ABE CA 12.2) 利用 重力 作用 毛细 GRA RE 4h) 实现 笔者 实验 观察 使 涡轮 印迹 核酸 1h 转移 标准 印迹 方法 吸水 材料 方法 仪器 真空 印迹 装置

12. 4. 2

12. 1 显示 放置 Schlercher Schuell

真空 印迹 系统 使 真空 协助 毛细 转移 样品 转移 缓冲 吸出 厂家 若干 真空 印迹 优点 (30~60min) 传统 毛细 Ct )。 快速 程度 减少 核酸 印迹 弥散 原本 清晰 扩散 必须 非常 压力 [30 50mbar (lbar=10°Pa) 真空 ], 实验 印迹 核酸 快速 转移 (Medveczky ,1987; Olszewska Jones, 1988); 蛋白 酰胺 转移 印迹 (下 讨论 ) 效果

12.4.4

真空 印迹 相反 核酸 推出 。PosiBlot 装置 〈Stratagene, La Jolla, CA) 利用 缓冲 15min) RNA DNA 转移 传统 毛细 真空 印迹 过程 核酸 扩散 保持 清晰 减轻 破裂 造成 问题 真空 印迹

12.4.5 印迹

印迹 完全 转移 方法 广泛 酰胺 转移 白质 琼脂 转移 核酸 方法 技术 形式 146

极其 简单 实验 58s。 12.4.3 ”真空 印迹

#128 Northern 印迹

特制 盒子 电泳 缓冲 容器 亿 装置 初始 电泳 方向 垂直 电压 迁移 标准 Western 印迹 方法 技术 形式 需要 缓冲 饱和 印迹 仪器 直接 接触 优势 转移 电压 电流 电流 电源 依赖 商业 装置 选择 Amersham Biosciences 公司 提供 Hoefer 产品 系列 ) 速度 直接 电流 相关 遵照 厂商 操作 使 电源 电压 仪器 尼龙 硝酸 纤维 印迹 ;研究 推荐 产生 相当 热量 操作 手册 强烈 建议 电泳 冷却 电泳 缓冲 电泳 控制 温度 Arnheim Southern (1977) Bittner 同事 (1980)

12.4.6 印迹

核酸 印迹 毛细 转移 毛细 转移 主要 核酸 变性 方法 差异 毛细 印迹 操作 使 L155 ~~ 20) X SSC SSPE] RNA 预先 变性 DNA 转移 情况 推荐 修饰 尼龙 ) 印迹 DNA 转移 0. 4mol/L NaOH 同时 进行 固定 尼龙 Northern 转移 限度 裂解 促进 RNA 必须 非常 RNA 完全 降解 转移 具体 参数 核酸 RNA 非特 异性 结合 转移 转移 缓冲 具体 转移 影响 详细 参考 Reed Mann (1985), Li“ (1987) Low Rausch (1994),

12. 4.7 ”实验 方案 : 毛细 扩散 转移 RNA

注意 ”需要 参见 12. 1

@ 整个 极力 避免 任何 核酸 污染 RNA 降解 威胁 它们 通过 固定 尼龙 )

@ Al EtBr 染色 含有 甲醛 缓冲 浸泡 2 3 进行 导致 转移 效率 丢失 妨害 杂交 效率

注意 ”将 溶液 转移 溶液 方便 甲醛 特别 操作

@a. 甲醛 : 5XSSC 除去 甲醛 染色 浸泡 3 10min 甲醛 同时 甲醛 拍照 染色 杂交 结果 荧光 背景 通过 浸泡 除去 彻底 脱色 需要 甚至 必需 笔者 实验 甲醛 缓冲 4C 脱色 SYBR 绿 SYBR 浸泡 5XSSC

推荐 : 50mmol/L NaOH, 10mmol/L NaCl 浸泡 10min, 100mmol/L Tris(pH7.5) 浸泡 30min, 10XSSC 浸泡 30min。 造成 RNA 骨架 帮助 RNA 通常 必需 RNA NaOH 溶液 存放 任何 杂交 RNA 骨架 提高

147 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

紫外 线 简单 定量 紫外 线 实现

@Qb. : 染色 “〈 脱色 ) 照相 立即 转移 转移

@) 左边 (上 ), lcm

® 按照 裸露 手指 油脂 结合 核酸 直接 铅笔 轮廓 模子 材料 GEAR. Whatman 滤纸 吸水 纸巾 ) 样子 尺寸 脱色 浸泡 缓冲 实验 购买 尺寸 合适 印迹 材料

@ 依照 广 准备 尼龙 硝酸 纤维 漂浮 RNase 2min。 均匀 湿 呈现 规则

© YR 2min 转移 缓冲 5XSSC 5XSSPE) 平衡 30s 转移 缓冲 直到 使

@ Whatman 3mm 滤纸 ), 2cm, 15cm。 滤纸 缓冲 滤纸

滤纸 转移 缓冲 10s, ) 滤纸 玻璃

© 转移 缓冲 滤纸 3 4cm 缓冲

@ 滤纸 气泡 气泡 转移 效率

@ 滤纸 滤纸 气泡 Parafilm 转移 系统 短路 @。

@ 仔细 气泡

@ BY 2 3 Whatman 3mm 滤纸 ) 滤纸 缓冲

ZB 湿 滤纸 滤纸 预先 湿 推动 毛细 效应 。-

@ 湿 Whatman 3mm 滤纸 杂交 气泡 滤纸

© 相同 吸水 5 6cm iB), KYW SER. HS 吸水 Whatman 3mm 滤纸 500g 课本 装置

注意 ”不 C ) 吸水 充分 选择 吸水 重新 任何 须要 细作 均匀 使 印迹 GB002 GB004 (Schleicher & Schuell) 替代 吸水

@ 转移 转移

@@ 结束 滤纸 吸水 使 记录 方向 准确 解释 杂交 数据 必需

@ 吸水 纸巾 滤纸 吸水 周围 滤纸 通过 缓冲 转移 缓冲 避免 因此 困难 必要 沿 封口 避免 纸巾 滤纸 直接 接触

148 -

$128 Northern 印迹

建议 冲洗 转移 缓冲 5XSSC 5X SSPE) YEHK 30s.

注意 简单 冲洗 残留 物品 碎片 固定 特异 增加 背景

CD 尼龙 湿润 线 湿 ;硝酸 纤维 空气 然后 尽快

12.4.8 实验 方案 : 涡轮 印迹 转移 RNA

注意 参见 12. 2。

DO 整个 操作 必须 极力 避免 任何 核酸 污染 RNA 通过 固定 纤维 ) 核酸 降解 威胁

@ 染色 含有 甲醛 缓冲 浸泡 2 3 Ka, AE 进行 导致 转移 效率 妨害 杂交 效率

注意 适合 溶液 转移 溶液 甲醛 特别 操作

Qa. 甲醛 : 5XSSC 除去 甲醛 染色 3 ;每 10min 甲醛 同时 拍照 染色 荧光 背景 通过 浸泡 除去 甚至 必需 笔者 实验 甲醛 缓冲 4C SYBR 绿 SYBR 5XSSC 利于 甲醛

推荐 : 50mmol/L NaOH, 10mmol/L NaCl 浸泡 10min, 100mmol/L Tris (pH7.5) 浸泡 30min, 10 X SSC 浸泡 30min。 造成 RNA 骨架 帮助 RNA 通常 必需 ,RNA NaOH 溶液 任何 RNA 骨架 提高 效率 紫外 线 简单 定量 紫外 线 照射 实现

@Qb. : Re GRANDE) 照相 立即

@ 选用 电泳 印迹 安装 涡轮 印迹 印迹 印迹 随后 步骤 封口

按照 裸露 手指 油脂 结合 核酸 直接 铅笔 轮廓 模子 材料 、Whatman 滤纸 吸水 纸巾 ) 样子 浸泡 缓冲 实验 购买 尺寸 合适 印迹 材料

© 依照 广 准备 尼龙 硝酸 纤维 ) 漂浮 RNase 2min。 /和 均匀 湿

。149 -

ee

alia linia

规则

© WAM ED 2min 转移 缓冲 5XSSC Bt 5 X SSPE) 平衡 30s 转移 缓冲 直到 使

© 转移 装置 底层 托盘 实验

托盘 20 JB FAY GB004 EWA.

© GB004 印迹 4 GB002 印迹

@ GB002 印迹 转移 缓冲 湿 5ml 气泡

@ 平衡 杂交

仔细 琼脂 杂交 超出 杂交 移动 杂交 杂交 露出 Parafilm 转移 短路

5ml 杂交 气泡

) 转移 缓冲 湿 3 GB002 印迹 心地 它们

® 5ml 气泡

© 转移 装置 缓冲 底层 托盘 环形 按钮 确保 正确

QD 缓冲 托盘 注入 转移 缓冲 印迹

@ 转移 缓冲 湿 滤纸 缓冲 托盘 启动 : FE UE LAFF bs BS AR HE a Hh 5c a FE EAL. PA ig OP IN Pt A RE

@ Am Tee EAC CURA WIE) Parafilm 建议 避免 蒸发 析出

OO 继续 转移 缓冲 需要 3 4h。 测定 样品 “〈 显示 )

Q@ 结束 滤纸 印迹 心地 使 记录 方向 准确 解释 杂交 数据 必需

2 建议 冲洗 转移 缓冲 (比如 5XSSC BE 5X. SSPE) 30s。

注意 简单 冲洗 物品 碎片 影响 样品 固定 杂交 特异 增加 背景

@ 尼龙 湿润 紫外 线 湿 ;硝酸 纤维 空气 然后 尽快

12.5

12. 5.1 ARERR

杂交 放心 保存 必要 样品 上。 固定 RNA 样品 稳定 tH RNase 降解 固定 马上 杂交 存储 王后 Whatman 3mm 滤纸 干燥

* 150 -

#128 Northern 印迹

准备 印迹 进行 脱色 甲醛 12.$.2” 变性 系统

电泳 变性 RNA 必须 杂交 除去

选项 1: 破坏 同时 固定 RNA。 浸泡 200ml 90°C 20mmol/L Tris (pH8.0) 快速 冷却 室温

选项 2: 固定 65 20mmol/L Tris(pH8. 0) YE 15min, RNA

12.6 @ z 4 #

FS Jae AR EAE RNA DNA 充分 固定 保证 转移 完全 同等 重要 必须 认识 尤其 RNA 固定 基质 安全 受到 核酸 自然 生物 降解 威胁 充分 固定 避免 杂交 杂交 洗涤 检测 丢失 核酸 固定 方法 适用 范围 几乎 尼龙 灵活 情况 具体 厂家 推荐 明智 原则

12.6.1

核酸 固定 技术 使 真空 使 样品 结合 硝酸 纤维 基质 相互 作用 真正 原理 清楚 认为 作用 方法 尽管 缺点 沿用 纤维 彻底 80°C HERG 2h。 硝酸 纤维 干扰 固定 肯定 固定 固定 完全 反复 杂交 样品 表面 随后 检测 定量

尼龙 通过 紫外 照射 固定 核酸 样品 需要 1 1. 5h, 温度 65C 使 真空 提高 核酸 结合 真空 实验 方案 认为 潮湿 尼龙 直接

12.6.2 紫外 线

固定 方法 使 定量 紫外 线 核酸 9 尼龙 〈Church Cilbert,1984, handjian,1987) 硝酸 纤维 进行 紫外 线 通过 紫外 线 照射 固定 核酸 尼龙 重要 危险

自从 Church Gilbert (1984) 方法 基因 测序 照射 固定 核酸 方法 波长 波长 紫外 线 254nm 302nm) 激发

@ 除了 功能 照射 琼脂 随机 RNA DNA 磷酸 替代 方案 取代 NaOH 溶液 浸泡 裂解 核酸 重复 随机 切口 促进 核酸 印迹

- 151 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

ARE OE ALR ME OE CELA REA IE) 反应 活性 状态 尼龙 尼龙 基质 表面 氨基 (Saito ,1981) 湿 尼龙 进行 效率 120000wJ/cm2 需要 160000 p.J /cm?

方法 固定 基质 核酸 稳定 重要 实验 报道 灵敏 固定 持久 打算 同一 复杂 研究 尤为 重要 往往 导致 目标 固定

实现 核酸 固定 方法 简单 明了 方法 当然 定量 紫外 线 Stratalinker,Stratagene,La Jolla,CA)。 仪器 自动 功能 120000pJ/ em? 输出 湿润 合适 输出 任何 没有 定量 紫外 线 标准 实验 紫外 线 透射 因为 缺乏 校正 设备 需要 试验 错误 分子 实验 紫外 线 波长 302nm 波长 ) 254nm 波长)。 254nm 紫外 推荐 302nm 紫外 实验 短波 照射 印迹 核酸 损失 降低 湿 直接 紫外 线 仪表 进行 照射

12.6.3 实验 方案 : RNA 紫外 尼龙

© Northern 方法 冲洗 RNA 1~2 Whatman 滤纸 液体 干燥 湿润 紫外 照射

G@) 紫外 线 透射 仪表 正面 (有 样品 ) 透射 仪表

当心 适当 保护 眼睛 正确 防护 皮肤 受到 严重 损伤

@) 合适 曝光 波长 仪器 使 302nm 仪器 lmin 足够 254nm 仪器 lmin 完成

注意 原则 仪器 具体 参数 实验 摸索

注意 2 笔者 实验 照射 估算 旋转 90" 照射 “《 转动 忘记 ) 旋转 考虑 透射 平行 排列 仪器 具体 仪器 必须 .

@ Whatman 3mm 滤纸

方案 超过 1min 紫外 线 取代 真空 2n。 线 随机 染色 RNA DNA HERE. DIR HESE SRE RE

12.7 国定 固定 完成 ,Northern 轻松 非常 清楚 细胞 涉及 稳定 RNA 操作 poly(A)+ 纯化 《有 必要 测定 浓度 纯度 保护 (第 16 ) 互补 DNACEDNA)

(第 18 ) 必须 围绕 RNA 具体 尽快 进行 样品 固定 固体 支持 ( 保存 直到 方便 进行 杂交 杂交 实验

aaa

#128 Northern 印迹

重要 事情 : 没有 杂交 需要 干燥 保存 干燥 受潮 微生物 侵蚀 杂交 杂交 完成 杂交 检测 尽快 严谨 保持 湿润 塑料 极为 困难

12.8 424 & #&

Alwine, J. C., Kemp, D. J., and Stark, G. R. (1977). Method for detection of specific RNAs in agarose gels by transfer to diazobenzyloxymethyl-paper and hybridization with DNA probes. Proc. Natl. Acad. Sci. 74, 5350.

Alwine, J. C., Kemp, D. J., Parker, B. A., Reiser, J., Renart, J., Stark, G. R., and Wahl, G. M. (1979). Detection of specific RNAs or specific fragments of DNA by fractionation in gels and transfer to diazobenzyloxymethyl paper. Methods Enzymol. 68, 220.

Arnheim, N., and Southern, E. M. (1977). Heterogeneity of ribosomal genes in mice and men. Ce// 11, 363.

Bittner, M., Kupferer, P., and Morris, C. F.(1980). Electrophoretic transfer of proteins and nucleic acids from slab gels to diazobenyloxymethy] cellulose or nitrocellulose sheets. Anal. Biochem. 102, 459.

Church, G. M., and Gilbert, W.(1984). Genomic sequencing. Proc. Natl. Acad. Sci. 81, 1991.

Khandjian, E. W. (1987). Optimized hybridization of DNA blotted and fixed to nitrocel- lulose and nylon membranes. Biotechnology 5, 165.

Li, J. K., Parker, B., and Kowalik, T. (1987). Rapid alkaline blot-transfer of viral dsRNAs. Anal. Biochem. 163, 210.

Low, R., and Rausch, T.(1994). Sensitive, nonradioactive Northern blots using alkaline transfer of total RNA and PCR-amplified biotinylated probes. BioTechniques 17, 1026.

Medveczky, P., Chang, C. W., Oste,C., and Mulder, C. (1987). Rapid vacuum drive trans- fer of DNA and RNA from gels to solid supports. Bio Techniques 5, 242.

Olszewska, E., and Jones, K. (1988). Vacuum blotting enhances nucleic acid transfers. Trends Genet. 4, 92.

Pitas, J. W. (1989). A simple technique for repair of nylon blotting membranes. BioTechniques 7, 1084.

Reed, K. C., and Mann, D. A. (1985). Rapid transfer of DNA from agarose gels to nylon membranes. Nucleic Acids Res. 13, 7207.

Saito, I., Sugiyama, H., Furukawa, N., and Matsuura, T. (1981). Photochemical ring open- ing of thymidine and thymine in the presence of primary amines. Tetrahedron Lett. 22, 3265.

Schleicher & Schuell, Inc. (1987). “Transfer and Immobilization of Nucleic Acids toS &S Solid Supports.” Schleicher & Schuell, Inc., Keene, NH.

Southern, E. M. (1975). Detection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis. J. Mol. Biol. 98, 503.

(KARE; SH FR)

¢ 153 -

13 meme RM

13.1 £AABE

核心 互补 核酸 通过 配对 形成 结构 杂交 (hybridization) 任何 杂交 实验 核酸 技术 Northern Southern 杂交 互补 〈target) 通常 固定 章节 ; (probe) 通过 实验 探测 标记 溶解 具有 特定 pH 离子 强度 溶液 ) 杂交 互补 进行 互补 杂交 方式 (mixed-phase hybridization), MUKA Be Mes 表面 定位 定量 完成

杂交 方式 进行 : 杂交 自由 移动 随机 碰撞 动力 驱动 任何 没有 固定 速度 混合 存在 提高 实验 灵敏 系数 10。 保护 实验 16 BE). RAMEE RI (PCR) 19 ) 溶液 进行 杂交 技术

特定 实验 选择 合适 选择 合适 定位 定量 杂交 反应 方法 理想 情况 杂交 反应 互补 序列 进行 杂交 核酸 能力, 使 广 下面 核酸

D) 基因 表达 变化 定量 定性

Q 基因 缺失

G@) FEA HH

染色

© 突变

© 细胞 存在 遗传 序列 )

PCR 通常 技术 核酸

标记 Cabel) 标记 (tag) ARERR. peice oF 整个 实验 进行 跟踪 标记 提供 检测 方法 历史 合成 《例如 标记 ) 检测 完全 依赖 放射 标记 放射 显影 检测 技术 方法 放射 标记 dNTP + 154 -

13 核酸 技术

研究 面临 迫切 问题 : 什么 情况 使 荧光 标记 检测 方案 替代 同位 标记 放射 显影 ?

直接 回答 : 通常 情况 依赖 实验 需要 精确 灵敏 情况 同位 方法 几乎 涉及 样品 固定 硝酸 纤维 ) 操作 Northern 、Southern 、Western 杂交 杂交 筛选 基于 Cin situ) 杂交 笔者 常常 :“ 放射 显影 方法 3 胶片 HP AS, 那么 荧光 方法 替代 失灵 3 同位 兼容 。?”

技术 灵敏 核酸 保护 实验 实验 放射 达到 效果 情况 PCR 技术 革新 替代

13.2

核酸 均一 均一 DNA fe RNA 分子 同一 相同 例如 实验 样品 检测 常见 cos 转录 产物 标记 c fos 互补 DNA 序列 (cDNA)。 均一 序列 核酸 相近 核酸 序列 完全 核酸 序列 构建 差异 表达 目标 通过 细胞 方法 共同 表达 基因 那些 特定 细胞 特异 表达 mRNA。 杂交 序列 例子 序列 同时 存在 同一 杂交 反应 清楚 目的 基因 序列 准备 采用 均一 杂交 那些 重复 序列 Cl Alx) 产生 干扰 杂交 信和

13.3 标记 系统 选择

选择 标记 系统 关键 需要 考虑

@ 达到 灵敏

@ 标记 方法

@ 标记 稳定

® 杂交

@ 检测 方法

标记 核酸 基本 方法 : @ 标记 ; 标记 [如 生物 (FL) 〈DIG)], 荧光 同位 检测 方式 ,@ 标记 情况 技术 标记 包括 DNA. RNA 通用 操作 技术 方法 缺点 合成 核酸 系统 商业 ; 达到 灵敏 系统 自己 检测 方法

@ 放射 显影 使 80C 进行 ¢ 155 =

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

根据 标记 核酸 进一步 标记 技术 功能 标记 标记 连续 标记 举例 标记 标记 5 末端 (例如 通过 激酶 反应 ) 3 末端 (例如 通过 末端 转移 @8) 沿 骨架 规律 间隔 进行 标记 例子 随机 引物 、PCR、 体外 转录 - 〈psoralen-biotin) 限于 选择 标记 选择 连续 标记 取决

@ DNA RNA。

Q

@ 5 末端 3' 突出

® 标记 直接 灵敏 相关 )

© 标记

© 线性 闭合 结构 质粒 )。

因素 权衡 考虑 详细 讨论

13.3.1 同位 标记

当心 ”使 存储 放射 材料 同位 操作 规则 什么 同位 活力 任何 必须 穿 手套 佩戴 防护 接受 适当 培训 使 靠近 同位 制度 同位 防护 ; 危险 材料 管理 任何 安全 考虑 特殊 广泛 适用 规定

灵敏 标记 技术 通用 同位 标记 缺点 8 问题 健康 潜在 危害 污染 昂贵 价格 垃圾 稳定 标记 相对

13.1 ”>P 衰变 数据

衰变 / 0.0 0.5 1.0 ES) 2.0 VARS, 3. 0 Sud 4.0 4.5 0 1. 000 0. 976 0. 953 0. 930 0. 908 0. 886 0. 865 0. 844 0. 824 0. 804 5 0. 785 0. 766 0. 748 0. 730 0. 712 0. 695 0. 678 0. 662 0. 646 0. 631 10 0. 616 0. 601 0. 587 0.573 0. 559 0. 545 0. 532 0. 520 0. 507 0. 495 15 0. 483 0. 472 0. 460 0. 449 0. 438 0. 428 0. 418 0. 408 0. 398 0. 388 20 0. 379 0. 370 0. 361 0. 353 0. 344 0. 336 0. 328 0. 320 0. 312 0. 305 25 0. 297 0. 290 0. 283 0. 277 0. 270 0. 264 0. 257 0: 250 0. 245 0. 239 30 0. 233 0. 228 0. 222 0. 217 0. 212 0. 207 0. 202 0. 197 0. 192 0. 188 35 0. 183 0.179 0.174 0. 170 0. 166 0. 162 0. 158 O.16o 0.151 0. 147 40 0. 144 0. 140 0. 137 0. 134 0. 130 0. 127 0. 124 0.121 0.118 0. 116 45 0; Lis 0. 110 0. 107 0. 105 0. 102 0. 100 0. 098 0. 095 0. 093 0. 091 50 0. 088 0. 086 0. 084 0. 082 0. 080 0. 078 0. 077 0. 075 0.073 0. 071 55 0. 069 0. 068 0. 066 0. 065 0. 063 0. 062 0. 060 0. 059 0. 057 0. 056 60 0. 054 0. 053 0. 052 0. 051 0. 049 0. 048 0. 047 0. 046 0. 045 0. 044

TE: 物理 14. 29

@ A Mai AG AT RTE @ 方便 读者 同位 半衰期 数据 13. 1 1: 。156 -

3.4 (数据 PerkinElmer Life Sciences )

13 核酸 技术

13.2 33P 衰变 数据

衰变 / 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 0 1. 000 0. 973 0. 947 0. 921 0. 897 0. 872 0. 849 0. 826 0. 804 0. 782 10 0. 761 0. 741 0. 721 0. 701 0. 683 0. 664 0. 646 0. 629 0. 612 0.595 20 0.579 0. 564 0. 549 0. 534 0. 520 0. 506 0. 492 0. 479 0. 466 0. 453 30 0. 441 0. 429 0. 418 0. 406 0. 395 0. 385 0. 374 0. 364 0. 355 0. 345 40 0. 336 0. 327 0. 318 0. 309 0. 301 0. 293 0. 285 0. 277 0. 270 0. 263 50 0. 256 0. 249 0. 242 0. 236 0. 229 0. 223 0. 217 0. 211 0. 205 0. 200 60 0. 195 0. 189 0. 184 0.179 0.174 0.170 0. 165 0. 161 0. 156 0. 152 70 0. 148 0.144 0. 140 0. 136 0. 133 0. 129 0. 126 0. 122 0. 119 0. 116 80 05113 0. 110 0. 107 0. 104 0. 101 0. 098 0. 096 0. 093 0. 091 0. 088 90 0. 086 0. 084 0. 081 0. 079 0.077 0.075 0. 073 0. 071 0. 069 0. 067 100 0. 065 0. 064 0. 062 0. 060 0. 059 0. 057 0. 055 0. 054 0. 053 0. 051 110 0. 050 0. 048 0. 047 0. 046 0. 045 0. 043 0. 042 0. 041 0. 040 0. 039 120 0. 038 0. 037 0. 036 0. 035 0. 034 0. 033 0. 032 0. 031 0. 030 0. 030 TE: 物理 半衰期 25.4 13.3 ”“S 衰变 数据 衰变 / 0 3 6 9 12 15 18 21 24 27 0 1. 000 0. 976 0. 954 0. 931 0. 909 0. 888 0. 867 0. 847 0. 827 0. 807 30 0. 788 0. 770 0. 752 0. 734 OPT 0. 700 0. 683 0. 667 0. 652 0. 636 60 0. 621 0. 607 0. 592 0.579 0. 565 0. 552 0. 539 0. 526 0.514 0. 502 90 0. 490 0. 478 0. 467 0. 456 0. 445 0. 435 0. 425 0.415 0. 405 0. 395 120 0. 386 0. 377 0. 368 0. 359 0. 351 0. 343 0. 335 0. 327 0. 319 0. 312 150 0. 304 0. 297 0. 290 0. 283 0. 277 0. 270 0. 264 0. 258 0. 252 0. 246 180 0. 240 0. 234 0. 229 0. 223 0. 218 0. 213 0. 208 0. 203 0. 198 0. 194 210 0. 189 0. 185 0. 180 0. 176 0.172 0. 168 0. 164 0. 160 0. 156 0. 153 240 0. 149 0. 146 0. 142 0. 139 0. 136 0. 132 0. 129 0. 126 0. 123 0. 120 270 0. 118 0.115 0.112 0. 109 0. 107 0. 104 0. 102 0. 099 0. 097 0. 095 300 0. 093 0. 090 0. 088 0. 086 0. 084 0. 082 0. 080 0. 078 0. 077 0. 075 330 0. 073 0.071 0. 070 0. 068 0. 066 0. 065 0. 063 0. 062 0. 060 0. 059 360 0. 058 0. 056 0. 055 0. 054 0. 052 0.051 0. 050 0. 049 0. 048 0. 046 TE: WRK RH 87.4 K. 13.4 *HRERE 衰变 / 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 ll 0 1. 000 0.995 0. 991 0. 986 0. 981 0. 977 0. 972 0. 968 0. 963 0. 959 0.954 0.950 1 0.945 0. 941 0. 936 0.°932 0. 928 0. 923 “3L9 0. 915 0. 910 0. 906 0.902 0.898 2 0. 893 0. 889 0. 885 0. 881 0. 877 0. 873 0. 869 0. 865 0. 860 0. 856 0.852 0.848 3 0. 844 0. 841 0. 837 0. 833 0. 829 0. 825 0. 821 0. 817 0. 813 0. 810 0.806 0.802 1 0. 798 0. 794 0. 791 0. 787 0. 783 0. 780 0. 776 0.772 0. 769 0. 765 0.762 0.758 5 0. 754 0. 751 0. 747 0. 744 0. 740 OWT 0. 733 0. 730 0. 727 0. 723 0.720 0.716 6 0. 713 0. 710 0. 706 0. 703 0. 700 0. 697 0. 693 0. 690 0. 687 0. 684 0.680 0.677 7 0. 674 0. 671 0. 668 0. 665 0. 661 0. 658 0. 655 0. 652 0. 649 0. 646 0.643 0. 640 8 0. 637 0. 634 0. 631 0. 628 0. 625 0. 622 0. 619 0. 616 0. 614 0. 611 0.608 0.605 9 0. 602 0. 599 0. 597 0. 594 0. 591 0. 588 0. 585 0. 583 0. 580 0.577 0.575 0.572 10 0. 569 0. 567 0. 564 0. 561 0. 559 0. 556 0. 553 0. 551 0. 548 0. 546 0.543 0. 541 11 0. 538 0. 535 0. 533 0. 530 0. 528 0. 526 0. 523 0. 521 0. 518 0. 516 0.513— 0.511 12 0. 509 0. 506 0. 504 0. 501 0. 499 0. 497 0. 494 0. 492 0. 490 0. 487 0.485 0. 483

= ol ~

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

标记 核酸 常用 同位 ?2 P、3? H AMOS, SP 偶尔 使 标记 磷酸 (ce >)。 作用 同位 转移 标记 方式 检测 方法 决定 同位 选择 ,2 标记 B 使 标记 X 射线 胶片 记录 杂交 事件 ;然而 同样 原因 解剖 P 标记 RNA 杂交 Bae RNA 细胞 精确 使 标记 检测 系统

» SP 减轻 ?P 产生 危险 。3?P 标记 常见 作为 选择 DNA 测序 〈Zagursky ,1991)。33P 半衰期 25.4 粒子 Emax =0. 25MeV, KAA? PC Emax =1.71MeV) 1779 NEN Life Sci- ence Products 公司 隶属 PerkinElmer) 表示 ,33P 实验 普通 放射 安全 进行 操作 操作 3?P 那样 需要 特殊 防护

13. 3. 1. 1 降解 问题

保存 因素 : 放射 同位 半衰期 生物 虽然 同位 半衰期 固定 生物 降解 材料 操作 温度 变化 放射 磷酸 存储 冰箱 室温 ) 改变 生物 降解 降解 产物 主要 包括 磷酸 磷酸 磷酸 存在 运输 温度 20C 许可 存储 80'C 提倡 存储 Te Fa UK AP

降低 放射 降解 问题 建议 安全 操作 使 完全 细节 参阅 PerkinElmer Life Sciences 《研究 放射 材料 安全 操作 》, 线 〈www. perkinelmer. comyjifesciences), 参考 @。

D 同位 尽快 使 延长 存储 导致 额外 原子 导致 同位 即使 同位 开封 理想 降解

@O) 适当 存储 样品 产品 技术 资料 卡片 产品 存储 描述 注意 ;

@ 打开 放射 包装 按照 技术 资料 卡片 行事

存储 溶液 3 H 标记 放射 535S、125] ”了 标记 生化 试剂 室温 解冻 融化 1 AS? P 标记 解冻 低温 放射 需要 缓慢 解冻 建议 冰箱

@ 放射 因为 急剧 降解 速度

@ 尽量 减少 原始 存储 容器 开启 使 重新 使 需要 独立 管子 使 溶液 杂质 氧气

@ 原始 容器 放射 使 干净 注射 因为 生物

@ ©P BiH th PerkinElmer Life Sciences aM @ 数据 使 授权 - 158 ,;

13 ,” 核酸 技术

实验 缓冲 放射 13.3.1.2 mae He 任何 ,32P 标记 放射 通过 公式 计算 SA cal.

SA(Ci/mmol) ~ Df+SA cal. (—Df)/9120 xP SA cal. ; D 太一 因子 衰变 ; 当前 放射 放射 指标 放射 ;

9120 稳定 同位 载体 稀释 ?>P 理论 任何 ,? P 标记 通过 :

Df SA(Ci/mmol) = —>—~"5 = ay

SA cal. 9120 13.3.2

尽量 减少 放射 同位 使 放射 同位 实验 产生 危险 检测 方法 5 精妙 改进 系统 根本 放射 同位 情况 低下 检测 情况 同位 达到 灵敏 3 P 相当 程度 依赖 操作 耐心 同位 标记 检测 系统 提供 相似 灵敏 它们 明显 : 使 角度 相对 复杂 ; @ 步骤 必须 使 亲自 操作 系统 检测 步骤 同位 标记 生物 标记 、DIG tric. FL 标记 直接 标记 、DIG FL 标记 通过 反应 方法 检测 反应 检测 技术 荧光 技术 检测 方法 没有 广泛 使 实验 反应 检测 技术 同位 标记 实验 常用 技术 使 放射 活性 想法 的, 研究 意识 使 方法 比较 同位 标记 技术 纯化 检测 方法 完全 ?了 注意 同位 标记 变化 常情 步骤 洗涤 必需 使 绝对 严格 洗涤 重复 杂交 洗涤 系列 安全 角度 使 同位 复杂 检测 方法 便

13.3.2.1 £m#

生物 溶性 维生素 容易 连接 生物 生物 标记 通过 方法 完成

© 使 生物

@ 光化学 使 具有 生物 -

G) 方法 合成 完成

FRR SER 5 标记 生物 容易 标记 方法 检测 角度 标记 确实 标记 几乎 影响 生物 活性

。159 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

生物 标记 Bio-11-dUTPe@ (图 13. 1) 连接 降低 空间 阻碍 作用 标记 20C 保存 1

P§13.1 4YR-11-dUTP(Bio-11-dUTP)

(streptavidin) 那样 生物 自然 亲和力 (Ka= 10-15L/mol) 蛋白 (M, 60000), MEER (Streptomyces avi- dizii) 生物 普通 RAW) 离子 生理 pH 降低 非特 异性 结合 背景 问题 提高 灵敏 核酸 杂交 检测 相关 技术 - 操作 (Leary 4, 1983; Wilchek Bayer, 1984; Hoffman Finn, 1985)。 基于 生物 标记 检测 系统 生物 制备 结合 系统 修饰 连接 磷酸 (alkaline phosphatase, AP) ; 系统 连接 氧化 Chorseradish peroxides,HRP)。 AP HRP 接触 特殊 定位 定量 ; 通过 X 射线 胶片 捕获 光子 ) 色素 沉积 完成 检测 )

13.3.2.2

Hh (DIG) (Roche Applied Science) 植物 (Digitalis) KE 药物 (Digitalis purbpurea ) 广 核酸 标记 支持 检测 (Martin ,1990) 。DNA 通过 标记 DIG-dUTP (DIG-11-dUTP; 13.2) 随机 引物 合成 RNA DIG-11-dUTP 体外 转录 合成 支撑 连接 DIG, DIG 标记 杂交 任何 基本 合成 DIG 标记 排除 那些 合格 效率 低下 标记 反应 生物 标记 ,DIG 干扰 生物 活性 标记 20C 稳定 保存 1 。DIG 标记 杂交 直接 通过 溶性 色素 沉淀 方式 检测

杂交 严格 洗涤 步骤 抗体 连接 (anti-DIG-AP) 连接 ,DIG 标记 通过 免疫 检测 检测 生物 检测 系统 光子 沉淀 形成

@ 常用 同位 dUTP 使 。Bio-1l-dUTP 表示 UTP, JE 生物 dUIP, 磷酸 11 原子 连接 生物 标记 技术 切口 平移 〈nick translation) 引物 PCR, RNA 使 Bio-11-UTP、DIG-11_UTP (DIG 标记 ) FL-11-UTP (FL 标记 )

* 160 -

13 核酸 技术

X4L 广 OH

13.2 -11-dUTP(DIG-11-dUTP)

磷酸 磷酸 引起 手段 检测 使 氧化 标记 抗体

2.2 eGR

荧光 fluorescein, FL) 标记 荧光 标记 DNA B RNA Git. FL-12-dUTP (Al 13.3) Fa Ftpid DNA ff, FL-12-UTP 标记 NA 荧光 标记 生物 DIC 标记 采用 方法 相同 引物 合成 直接 FL 抗体 进行 定位 AP HRP 抗体 通过 反应 检测 抗原 荧光 ) 荧光 监测 荧光 情况 估计 标记 反应 效率

see a O O O SS HO ¢ O . O

13.3 ”荧光 -12-dUTP(CFL-12-dUTP)

FL 标记 检测 系统 提供 传统 方法 试剂 使 注意 光标 标记 方法 开发 广泛 比较 常用 荧光 染料 Cy3 Cy5。 标记 DNA 方式 : 直接 标记 Cy3 Cy5 mice MRM, TRAM PABBA; 间接 标记 方式 DNA 合成 dUTPCaminoallyl-dUTP) ak aa de hi A dCTP(aminoallyl-dCTP), 27 2 WORF Cy3 Cy5 连接 荧光 试剂 标记 常用 合成 CDNA 进行 阵列 23 BE),

13.4 DNA 44%

DNA DNA 克隆 cDNA、 基因 DNA 序列 标记 dNTP, WRB HIRE FEL mRNA 混合 模板 合成 。161 .

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

cDNA PCR 产物

@ WH cDNA 基因 DNA, 标记 完成 作为 使 变性 产生 相应 标记 技术 产物 DNA 标记 生物 技术 产品 供应 商都 RNA 比较 ,DNA 缺点 动力 稳定 1 14 严谨 论述 ) 实验 结果 影响 常常 忽略

@ cDNA, 标记 dNTP 存在 mRNA 合成 《或 相关 合成 ) 产生 直接 杂交 序列 存在 RNA 确定 存在 特别 方便 考虑 讨论 21 研究 普遍 方法

@ HRTREATA RA HE DNA。 PCR 方法 明之 , “oligos” 标准 使 ,PCR 目的 片段 引物 容易 单独 FAVE ARMENIA ZR CHR ET. BERT IRA ON “KK” SRAM “i” BRA, “KR” RAB 100 *VA LAY DRE, “I” SEEK BUR 30 SORAE. TERA TET, DERE A AW 5e 控制 序列 序列 定制 使 主要 缺点 主要 优点 相同 : 因为 研究 决定 序列 必须 知道 选择 什么 序列 进行 实验 灵活 操作 自由 序列 信息 保存 核酸 序列 数据 生物 相关 基因 序列 目的 基因 编码 蛋白 序列 方法 问题 遗传 密码 氨基 密码 氨基 序列 设计 方法 氨基 密码 氨基 BABAR: 具有 包括 酰胺 酰胺 知道 相对 物种 密码 具有 确定 序列 信号 需要 使 序列 选择 降低 杂交 温度 洗涤 弥补 信号 严谨 降低 方法 降低 正确 互补 序列 比例 非特 异性 杂交 重点 真正 杂交 事件 检测 核酸 杂交 细节 参考 14

® 任何 PCR 产物 PCR 进行 HR TE AED AB PCR 产物 ; 借助 引物 模板 引物 SG 标记

13.4.1 DNA 合成

标记 DNA 方法 方法 产生 标记 连续 标记 标记 技术 依赖 聚合 活性 标记 产物 而且,Taqd DNA 聚合 稳定 DNA 聚合 使 使 标记 反应 通过 PCR 反应 进行 减少 合成 聚合 引起 考虑 Tag 使 校正 19 描述 混合 帮助

- 162 -

13 BMRA

常用 技术 简单 叙述 标记 反应 商业 相关 试剂 包括 必需 试剂 包括 放射 标记 同位 产生 放射 标记 系统 作为 标记 系统 使 放射 同位 标记 a 标记 y Mic).

13. 4.1.1 聚合 (PCR) @

PCR 合成 方法 模板 合适 放射 同位 标记 情况 ,PCR 产物 合成 标记 方法 合成 同位 标记 ,PCR 反应 混合 需要 标记

PCR 作为 标记 方法 具有 优点 : 快速 效率 普遍 实验 PCR) 微量 模板 合成 相同 PCR 方法 连续 标记 标记 程度 PCR 反应 参数 详细 讨论 相关 策略 参考 Dieffenbach Dveksler (2003), Innis (1999), McPherson Hames (1995), Sambrook Russell (2001)

13. 4.1.2 随机 引物

随机 引物 引物 延伸 反应 反应 混合 序列 作为 引物 变性 模板 进行 退火 (Feinberg Vogelsteinmi,1983,1984)。 退 引物 DNA 聚合 Klenow 片段 引物 3 标记 引物 线性 DNA 存在 工作 ; 标记 闭合 We DNA 导致 特异 反应 降低 线 DNA 特异 反应 闭合 DNA 特异 反应 20 30 标记 反应 ,200 2000bp KEE DNA 随机 引物 模板 模板 决定 因素 ?了 标记 2. 5 10ng 模板 引物 约会 产生 〈1 3) X109cpmy/ Ag 通常 需要 10 30min。

13.4.1.3 切口 平移

切口 平移 (Rigby ,1977) 标记 方法 方法 需要 使 DNase | 7E DNA 骨架 随机 切口 模板 4 5 自由 3- 羟基。 切口 3 - 作为 引物 ,DNase 工会 5 3 方向 切除 核酸 活性 ), 5'>3’DNA 聚合 活性 标记 dNTP 平移 线性 闭合 DNA 具有 效率 需要 lh, FAY P 标记 产生 〈3 5) x 108 cpm/pg

13.4.1.4 .5 末端 标记

连续 标记 替代 方案 DNA 5 末端 放射 同位 5 末端 标记 方法 俗称 激酶 反应 特异 ATP (AEE dATP) 7-BR 转移 磷酸 DNA 5 -OH 《和 反应 )。 标记 反应 4

@ PCR 方法 专利 保护 Roche Molecular Systems, Inc. 下. Hoffmann-LaRoche Ltd。 ,PCR 使 。PCR 必须 授权 使 特殊 细节 联系 Director of Licensing, Applied Biosys-

tems, 850 Lincoln Centre Drive, Foster City, CA 94404,

- 163 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

激酶 催化 标记 方法 实验 标记 实验 共同 错误 购买 标记 连续 标记 3 ' 标记 ), Y ATP.

激酶 反应 效率 逆向 效率 交换 反应 替换 5 RNA 磷酸 效率 忽略 DNA 激酶 反应 需要 30min, 产生 放射 (SA) 广 青睐 5 修饰 同位

13.4.1.5 3’ Rssapis

3 末端 标记 方式 进行 合成 使 DNA RNA 3 末端 DNA 3 末端 标记 常用 脱氧 普通 末端 转移 DNA 3-OH 末端 dNTP; 末端 3 末端 突出 DNA 片段 标记 效率 需要 模板 dNTP (或 dNTP 混合 ) 作为 3 末端 标记 ; 转移 认为 模板 依赖 聚合 标记 导致 3 末端 突出 5 6 末端 根据 需要 DNA 聚合 [的 Klenow 片段 末端 连接 方法 使 标记 损失 zz DNA 聚合 没有 校正 功能 聚合 末端 转移 活性 ; SATA, Tag DNA 聚合 合成 3 末端 通常 “A”。 Taq DNA PCR 产物 3 末端 “A”。

标记 标记 方法 缺点 显现 改变 改变 特异 动力 特性 通过 3 方式 标记 建议 使 dATP, A :: 稳定 G :::C 基于 定性

13.4.1.6 直接 标记

标记 DNA 技术 使 标记 附加 技术 支持 开发 替代 方案 方法 直接 标记 ~CECL System; Amersham Biosciences, Piscat- away,NJ), 通过 DNA 骨架 产生 Hes 方法 具有 标记 效率 需要 20min 完成 标记 需要 步骤 除去 没有 标记 DNA 5min, 迅速 冷却 程度 减少 ;然后 修饰 HRP 连接 DNA 上。 因为 标记 完成 煮沸 DNA 相对 重新 配对 标记 需要 标记 立即 杂交 混合 整个 杂交 洗涤 步骤 14 ) 调整 必须 通过 强度 调节 稳定 SDS 尿素 ) 使 完成 温度

13.5 RNA #4

RNA 作为 杂交 工具 仍然 常用 它们 具有 重要 优点 体外 转录 方式 合成 EA DNA 转录 模板 结构 转录 cDNA RNA 聚合 启动 启动 * 164 -

eS ee en ee eee

克隆 限制 相反 方向 常见 结构 SPO A T7 3 噬菌体 RNA RAAB OS CA 13.4)。 转录 反应 启动 通过 适当 限制 线性 效率 转录 具有 相同 连续 标记 CA 13.5).

同一 模板 结构 正义 转录 产物 构成 需要 RNA RNA mRNA 互补 mRNA 进行 转录 研究 RNA 除了 翻译 平抑 基因 表达 形成 翻译 Wet RNA 结构 RNA (CRNAi)

13 “核酸 技术

DNA 序列

13.4 支持 体外 转录 质粒 结构 RNA 聚合 启动 转录 方向 启动 通常 cDNA。 转录 结构 进行 线性

核心 RNA 体外 哺乳 动物 系统 调控 基因 表达 〈Nishik- rua Murray,1987) 结果 植物 (Green ,1986)

动物 〈(Knecht Loomis, 1987)

cDNA 插入 序列

Ease Scope TESS

正义 RNA

质粒 载体

载体 线性 \

体外 转录

-一 RUHERNAH REY CRNA

13.5 体外 转录 必须 线性 利于 提高 转录 效率 转录 具有 相同 注意 转录 产物 正义 RNA (sense RNA) RNA (antisense RNA)。 cDNA HF i 知道 ,那么 必须 启动 产物

例如 研究 确定 细胞 正在 合成 N-myc mRNA,, 描绘 病理 特征 检测 准备 切片 进行 杂交 @。 研究 目标

O 杂交 探讨 参考 Chesselet (1990), Wilkinson (1992) Nuovo (1994),

165

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

mRNA, 需要 使 RNA RNA mRNA 杂交 具有 动力 稳定 允许 严谨 进行 RNA mRNA 具有 相同 序列 ) 需要 转录 估计 非特 异性 杂交 程度 方法 DIG 标记 UTP (Roche Applied Science, Indianapolis, IN) FL 标记 UTP (Am- ersham Biosciences, Piscataway, NJ) 存在 正义 RNA RNA 合成 通过 检测 沉淀 通过 光学 显微镜 检测 FP AN BW. FIRM RNA 片上 RNA 通过 Northern 印迹 结合 共同 确定 N-myc mRNA 定性 信息

13.5.1 RNA 特点

@ RNA 使 需要 煮沸 稍微 形成 配对

@ PRA RNA 杂交 它们 DNA 那样 反应 降低 浓度

@ RNA 转录 连续 标记 生成 标记

45 DNA 比较 ,RNA DNA RNA 动力 稳定 |

@ RNA 通过 体外 转录 方法 同一 模板 合成

© 体外 转录 反应 合成 RAN @

@ 构建 转录 模板 转录 CDNA RNA 聚合 启动 使 载体 克隆 转录 方向 相反 RAN RAB 需要 RNA RNA 转录 常用 SE6 T7 3 MAA RNA 聚合 启动

@ 实验 显示 ,SP6 Al T7 sk T3 噬菌体 RNA 聚合 启动 交叉 识别 启动 开始 启动 启动 相反 方向 转录

@ 合成 RNA 质粒 开始 体外 转录 线性

RNA 转录 RNA RNase 试剂 导致 转录 迅速 降解

@@ RNA 常会 产生 接受 亮度 背景 常会 RNase A RNase Ti 消化 除去 没有 形成

@ 放射 同位 标记 RNA 活力 它们 放射 照射 降解

13.5.2 RNA 合成

DNA 合成 方法 RNA 合成 方法 体外 转录 RNA 容易 降解 RNase 作用 敏感, RNA RNA 那样 介绍 RNA 标记 技术 。RNRA

@ 文章 (Krieg Melton, 1987) 报道 - 166 -

通过 降低 标准 反应 温度 提高 转录 产物 比例

13 “核酸 技术

转录 系统 试剂 商家 同位 必需 试剂 包括 系统 没有 同位 工作

13.5.2.1 体外 转录

合成 RNA 转录 唯一 方法 量具 相同 标记 连接 RNA 启动 DNA 序列 转录 方法 需要 转录 DNA 序列 克隆 具有 相反 转录 方向 启动 DNA RNA RNA RNA 克隆 载体 (Promega,Madison,WI) 进行 RNA 体外 转录 实验 非常

正如 体内 ,RNA 体外 转录 NTP 聚合 完成 延长 通过 磷酸 添加 初生 产物 骨架 完成 连续 标记 ,RNA 标记 需要 [3PJjUTP 同位 标记 vc 标记 合成 完成 标记 非常

100 S252) 15 Re RID

方法 通过 体外 转录 产生 连续 标记 RNA 5 末端 放射 同位 。5 末端 标记 俗称 激酶 反应 特异 ATP RNA DNA 5-OH 反应 )。 替换 5 末端 磷酸 交换 反应 激酶 反应 具有 效率 反应 T4 激酶 催化 方法 标记 DNA 标记 RNA 效率 常用 RNA 原因

通过 标记 实验 共同 错误 购买 o 标记 3’ 末端 标记 ) 需要 y 标记 ATP.

RNA poly(A) 聚合 进行 3 末端 标记 生物 体内 催化 细胞 hnRNA ,把 AMP BA 3 末端。 同位素 需要 a 标记 ATP RNA 合成 反应 ,poly(A) 聚合 参与 poly(A) mRNA RNA WA RR. Wt oligo(dT) 引物 cDNA 合成。 虽然 标记 方法 实际 合成 选择

13.6 纯化

标记 技术 标记 标记 使 同位 常会 导致 背景 接受 程度 基本 纯化 获得 商家 建议

方法 乙醇 沉淀 情况 标记 纯化 方法 沉淀 比较 困难 核酸 同时 乙醇 5 5. 2), 0. 1 体积 3mol/L 乙酸 2. 5 体积 95%

常用 纯化 方法 修改 方案 流行 方法 制作 离心 (Sambrook Russell,2001), 含有 lml 注射 (Sephadex) (Amersham Biosciences), Sephadex G-50 纯化 ,Sephadex G-25 纯化 〈spun-column chromatography) 广

167 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

1000Xg 1200Xg& 离心 离心 4min Ba; 没有 柱子 方法 往往 除去 超过 95%% 标记 标记 方法 广泛 使 同位 同位

常用 纯化 方法 使 浓缩 材料 吸附 材料 纯化 Elutip-d (Schleicher & Schuell, Keene, NH). Ultrafree WAS (Ultrafree filtration units) Centricon 系列 (Centricon devices) (Millipore, Billerica, MA), 574% 乙醇 沉淀 比较 纯化 方法 具有 快速 便 优点 材料 放射 标记 废物 污染

13.7 44666

保持 足够 剩余 放射 活性 同位 标记 标记 标记 立即 使 放射 作用 那些 具有 活力 保存 延长 严重 使 保存 20C 80C,

标记 需要 根据 标记 储存 操作 建议 进行 标记 \ 标记 荧光 标记 20C 保存 1 实验 标记 需要 杂交 实验 需要 使 否则 变性

13.8 ABA BH

研究 技术 操作 误差 导致 科研 工作 错误 层面 实验 技术 数据 方面 排除 转录 错误 通用 方法 测定 (internal control) 标准 (endogenous standard) 表达 情况 实验 操作 变化 通常 HA (reference) 基因 (housekeeping genes) 基因 转录 产物 使 样品 标准 意义 比较 ); 目的 基因 印迹 同一 样品 系列 基因 进行 因为 Northern 原理 使 技术 普遍 缺乏 灵敏 需要 重复 核酸 保护 实验 (参见 16 Be). 转录 聚合 反应 〈RT-PCR) 19 ) 定量 PCR 技术 (参见 20 B) 获得 灵敏 数据 使 什么 方法 基因 必要

然而 通用 表达 基因 身受 细胞 影响 改变 自然 没有 适合 情况 常用 参照 基因

J 蛋白 〈B-actin) 表达 转录 产物 , LAR 细胞 表达 (Kinoshita ,1992) 历史 作对 产物 仍然 使 文章 显示 基因 表达 根据 刺激

状态 生变 〈Leof ,1986; de Leeuw ,1989; Dodge 4, 1990; Solomon 1991; Spanakis, 1993)

OQ HTWME-3-HF MI LE (GAPDH) 具有 转录 产物 编码 途径 。168 -

13 BMRA

关键 。GAPDH 表达 转录 产物 作为 参照 基因 使 广 实验 使 B-actin 情况 ,GAPDH 基因 表达 容易 受到 影响 (Alexander ,1990; Mansur ,1993; Bhatia ,1994)

@ 蛋白 〈cyclophilin) 参与 蛋白 基因 具有 保守 细胞 RNA 转录 产物 转录 产物 作对 HEA mRNA 表达 变化 (Danielson ,1988; Haendler Hofer, 1995).

@ 蛋白 〈histones) 〈nucleosome) 形成 必需 具有 转录 产物 基因 检测 (Robert ,2002)

@ 基因 粘连 蛋白 “〈 转录 产物 细胞 基质 )、 摄取 )、 蛋白 蛋白 蛋白 降解 )、 蛋白 构成 单元 ) mRNA 广泛 作对 基因 表达 蛋白质 产物 细胞 特定 功能 基因 表达 mRNA 波动 检测

© 28S rRNA 18S rRNA 核糖 转录 调节 产物 转录 产物 恒定 常用 (de Leeuw ,1989; Bonini Hofmann,1991)。 转录 产物 核糖 必需 认为 ,28S rRNA 18S rRNA 作为 电泳 作为 基因 表达 它们 RNA 聚合 产物 mRNA 剪接 hnRNA RNA 聚合 转录 RNA 聚合 生物 (xenobiotics) 具有 敏感 实验 操作 引起 RNA 聚合 完全 抑制 RNA 聚合 RNA 聚合 继续 接近 正常 转录 情况

@ 线粒体 16S rRNA, 线粒体 细胞 16S rRNA 线粒体 基因 表达 实验 操作 影响 程度 细胞 tRNA 基因 (Tepper ,1992), 核糖 mRNA,, 考虑 @ 问题

@ 转移 RNA (tRNA) 转录 产物 翻译 氨基 核糖 tRNA 特异 测量 tRNA 。tRNA RNA 聚合 适合 基因 表达 @9

定量 体外 转录 RNA 样品 作对 转录 产物 通常 实验 转录 产物 识别 目的 转录 相似 定性 ; 电泳 结果 显示 确保 目的 片段 沿 相同 思路 RNA RT-PCR 和信 真正 RNA 样品 “〈 蛋白 mRNA) 特别 蛋白 转录 产物 通过 PCR 进行 理想 情况 样品 RNA 相同 样品 mRNA 精确 含量 通过 比较 蛋白 PCR 产物 实验 样品 进行 标准

© “@”, 认为 “@”。 - 169

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

进而 转录 反应 效率 方法 实验 操作 原因 引起 实验 结果 波动 此外, 通过 添加 浓度 RNA 样品 亮度 相关 标准 曲线 目的 比较 RT-PCR 定量 细节 参考 19 20

io 2

Alexander, M., Denaro, M., Galli, R., Kahn, B., and Nasrin, N. (1990). Tissue-specific gene regulation of the glyceraldehyde-3-phosphate-dehydrogenase gene by insulin cor- relates with the induction of an insulin-sensitive transcription factor during differenti- ation of 3T3 adipocytes. In “Obesity: Toward a Molecular Approach,” (G. Bray, D. Ricquire, and B. Spiegleman, Eds.) pp. 247-261. A. R. Liss, New York.

Bhatia, P., Taylor, W., Greenberg, A., and Wright, J. (1994). Comparison of glyceralde- hyde-3-phosphate-dehydrogenase and 28S ribosomal RNA gene expression as RNA loading controls for northern blot analysis of cell lines of varying malignant potential. Anal. Biochem. 216, 223.

Bonini, J. A., and Hofmann, C. (1991). A rapid, accurate nonradioactive method for quan- titating RNA on agarose gels. Bio Techniques 11, 708.

Chesselet, M. F. (1990). “Jn Situ Hybridization Histochemistry.” CRC Press, Boca Raton. FL.

Danielson, P., Forss-Petter, S., Brow, M., Calavette, L., Douglas, J. Milner, R., and Sutcliffe, J. (1988). A cDNA clone of the rate mRNA encoding cyclophilin. DNA 7, 261.

de Leeuw, W. J., Slagboom, P., and Vijg, J. (1989). Quantitative comparison of mRNA lev- els in mammalian tissues: 28S ribosomal RNA level as an accurate internal control. Nucleic Acids Res. 17, 10137.

Dieffenbach, C., and Dveksler, G. S. (Eds.). (2003). “PCR Primer,” 2nd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.

Dodge, G. R., Kovalszky, I., Hassell, J. R., and Iozzo, R. V. (1990). Transforming growth factor B alters the expression of heparin sulfate proteoglycan in human colon carci- noma cells. J. Biol. Chem. 265, 18023.

Feinberg, A. P., and Vogelstein, B. (1983). A technique for radiolabeling DNA restriction endonuclease fragments to high specific activity. Anal. Biochem. 132, 6.

Feinberg, A. P., and Vogelstein, B. (1984). Addendum: A technique for radiolabeling DNA restriction endonuclease fragments to high specific activity. Anal. Biochem. 137, 266. Green, P., Pines, O., and Inouye, M. (1986). The role of antisense RNA in gene regulation.

Ann. Rev. Biochem. 55, 569.

Haendler, B., and Hofer, E. (1995). Characterization of the human cyclophilin gene and of related pseudogenes. Eur. J. Biochem. 190, 477.

Hoffman, K., and Finn, F. M. (1985). Receptor affinity chromatography based on the avidin-biotin interaction. Ann. N. Y. Acad. Sci. 447, 359.

Innis, M. A., Gelfand, D. H., and Sninsky, J. J. (1999). “PCR Applications: Protocols for Functional Genomics”. Academic Press, San Diego, CA.

Kinoshita, T., Imamura, J., Nagai, H., and Shimotohno, K. (1992). Quantification of gene expression over a wide range by the polymerase chain reaction. Anal. Biochem. 206, 231.

Knecht, D. A., and Loomis, W. F. (1987). Antisense RNA inactivation of myosin heavy chain gene expression in Dictyostelium discoideum. Science 236, 1081.

Krieg, P. A., and Melton, D. A. (1987). In vitro synthesis with SP6 RNA SIs olymerase. Methods Enzymol. 155, 397. iis.

* 170

13 BMRA

Leary, J. J., Brigati, D. J, and Ward, D. C. (1983). Rapid and sensitive colorimetric method for visualizing biotin-labeled DNA probes hybridized to DNA or RNA immobilized on nitrocellulose. Proc. Natl. Acad. Sci. 80, 4045.

Leof, E. B., Proper, J. A., Getz, M. J, and Moses, H. I. (1986). Transforming growth factor type beta regulation of actin mRNA J. Cell Physiol. 127, 83.

Mansur, N., Meyer-Siegler, K., Wurzer, J., and Sirover, M. (1993). Cell cycle regulation of the glyceraldehyde-3-phosphate-dehydrogenase/uracil DNA glycosylase gene in normal human cells. Nucleic Acids Res. 4, 993.

Martin, R., Hoover, C., Grimme, S., Grogan, C., Holtke, J., and Kessler, C. (1990). A highly sensitive, nonradioactive DNA labeling and detection system. Bio Techniques 9, 762.

McPherson, M. J., and Hames, B. D. (Eds.). (1995). “PCR 2: A Practical Approach.” IRL Press at Oxford University Press, Oxford, England.

Nishikura, K., and Murray, J. M. (1987). Antisense RNA of proto-oncogene c-fos blocks renewed growth of quiescent 3T3 cells. Mol. Cell. Biol. 7, 639.

Nuovo, G. J. (1994). “PCR in situ Hybridization.” Raven Press. New York.

Rigby, P. W. J, Dieckmann, M., Rhodes, C., and Paul, P. (1977). Labeling deoxyribonucleic acid to high specific activity in vitro by nick translation with DNA polymerase I. J. Mol. Biol. 113, 237.

Robert, C., McGraw, S., Massicotte, L., Parvetoni, M., Gandolfi, F., and Sirad, M. A. (2002). Quantification of housekeeping transcript levels during the development of bovine preimplantation embryos. Biol. Reprod. 67, 1465.

Sambrook, J, and Russell, D. W. (2001). “Molecular Cloning: A Laboratory Manual,” 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.

Soloman, D. H., O’Driscoll, K., Sosne, G., Weinstein, I. B., and Cayre, Y. E. (1991). 1 alpha,25-dihydroxyvitamin D3-induced regulation of protein kinase C gene expres- sion during HL-60 cell differentiation. Cell Growth Differ. 2, 187.

Spanakis, E. (1993). Problems related to the interpretation of autoradiographic data on gene expression using common constitutive transcripts as controls. Nucleic Acids Res. 16, 3809.

Tepper, C. G., Pater, M. M., Pater, A., Xu, H., and Studzinski, P. (1992). Mitochondrial nucleic acids as internal standards for blot hybridization analyses. Anal. Biochem. 203, 127.

Wilchek, M., and Bayer, E. A. (1984). The avidin-biotin complex in immunology. Jmmunol. Today 5(2), 39.

Wilkinson, D. G. (Ed.). (1992). “In Situ Hybridization: A Practical Approach.” IRL Press at Oxford University Press, Oxford, England.

Zagursky, R. J., Conway, P. S., and Kashdan, M. A. (1991). Use of 33P for Sanger DNA sequencing. Bio Techniques 11, 36.

;, )

S48 GHAXWA

14.1 #ABE

1961 Marmur Doty 具体 描述 核酸 杂交 调控 参数 生物 研究 复杂 难以 理解 核心 互补 方式 形成 现象 螺旋 形成

利于 核酸 杂交 构成 它们 特定 暗示 通常 携带 标记 杂交 结束 进行 定位 定量 通常 支持 利于 基础 “〈 North- ern 斑点 印迹 ); 缓冲 参与 杂交 CUS] 核酸 )。

举例 : RNA 含有 mRNA。 特定 研究 目标 确定 活体 解剖 细胞 omy 转录 解决 问题 合适 互补 cmyc 转录 杂交 CDNA 序列 基因 序列 RNA FRI TEKH R. cmyc 特异 2P 标记 利于 放射 检测 ;或 13 任何 支持 标记 技术 Chapten) 标记 直接 标记 足够 ,czzayc 互补 c-myc 转录 杂交 相应 转录 特定 操作 (mol) 互补 互补 配对 同样 研究 基因 表达 情况 需要 目的 基因 操作 策略 含有 RNA 样品 杂交 : 检测 严格 洗涤 同一 完全 检测 mRNA 杂交

杂交 结束 洗涤 没有 结合 剩余 计算 方式 实验 初期 使 标记 方法 通过 放射 显影 通过 技术 射线 胶片 永久 记录 标准 希望 制备 标准 杂交 少量 检测 目的 核酸 方法 避免 猜测 相对 实验 样品 标准 相对

14.2 影响 动力 因素

Southern 印迹 (Southern, 1975) 描述 DNA 相应 DNA aE Fe Dl AY 杂交 DNA : DNA 热力 方面 没有 RNA $a RNA & 172+

14 “核酸 杂交

同时 参与 杂交 DNA :RNA RNA : RNA 稳定 杂交 杂交 洗涤 严谨 严谨 根据 CDNA : DNA/DNA : RNA/RNA: RNA) 调整

举例 : 研究 互补 DNA(CcDNA) 检测 斑马 序列 差异 基因 存在 斑马 基因 存在 保守 基因 序列 因为 序列 差异 基因 严格 杂交 鉴定 斑马 基因 序列 存在 cDNA 互补 序列 通过 Northern Southern 必须 降低 杂交 严谨 章节 描述 依据 互补 原理 杂交

影响 速度 异性 因素 : 温度 强度 Na+ ) pH, ALAA COP RR). Re SRY Mime (G+C) 复杂 序列 ) 互补 程度 体系 黏稠 因素 限于 因素 重要 变量 影响 取决 状态 : OF 杂交 特异 杂交 混合 随机 移动 核酸 保护 实验 聚合 CPCR);,@ 序列 Northern 印迹

14.2.1 #8E

促进 阻止 杂交 变量 温度 考虑 变量 计算 温度 (Tu ), 衡量 杂交 稳定 预测 杂交 认为 Ta 平衡 。Ta 50%% 杂交 50 温度 Ta 形成 正在 现象 常用 指标 DNA 260nm 波长 紫外 吸光 WHE DNA 开始 变性 吸光 增加 程度 比例 增色 效应 检测 通常 鉴定 热力 稳定

速率 计算 Tn 15 20C 观测 溶液 杂交 温度 60 65'"C 酰胺 参数 影响 针对 核酸 杂交 核酸 温度 相差 1C 相应 核酸 序列 差异 相差 1% (Bonner ,1973) 酰胺 常会 改变 情况 幅度 降低 杂交 温度

Tn 502% 形成 研究 显然 希望 50%% 实际 操作 杂交 温度 通常 Ta 5C 理由 认为 序列 严格 配对 特别 正确 完全 实际 情况 洗涤 又, 杂交 检测 严谨 情况 室温 进行 杂交 极其 ;只 检测 正确 低温 杂交 结果 产生 负面 影响

14.2.2 离子 强度

增加 减少 杂交 缓冲 浓度 影响 实验 严谨 浓度 增加 增加 ,1. 2mol/L NaCl 杂交 速度 稳定 ; 浓度 变化 10 - 173 +

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Tm 变化 16°C (Britten Davidson, 1985). 阳离子 . 离子 影响 避免 使 乙烯 - 乙烯 ) 乙酸 [ethylene -bis《〈《oxyeth- ylenenitrilo) tetraacetic acid, EGTA] 试剂 使 乙酸 (EDTA) 杂交 缓冲 强度 0. 1 1. Omol/L Na

14.2.3 pH

环境 pH 广泛 影响 稳定 因素 杂交 反应 接近 pH 环境 进行 缓冲 促进 酸性 缓冲 使 Mi, He. pH 核酸 杂交 调整 变量

14.2.4 RHKE

根据 表达 公式 D=500/L, HREM KE BUT Ta 计算 螺旋 稳定 )。 tH, DAS HSE Tm 减少 ); 实际 参与 形成 数目 〈Britten Da- vidson,1985) 容易 迅速 识别 常规 变量 影响

14.2.5 浓度

研究 杂交 缓冲 数量 慎重 考虑 浓度 增加 杂交 动力 增加 浓度 减少 饱和 作为 尤其 导致 非特 异性 杂交 想象 PCR

合适 浓度 考虑 变量 : 检测 方法 ;,@@ 拷贝 基因 数量 必须 依据 |14.1 方针 质量 特异 同位 标记 )。 使 杂交 洗涤 严谨 比较 容易 操作

14.1 推荐 使 核酸 浓度

ge 质量 /(ng/ml) 活性 /(cpm/ml) 同位 标记 拷贝 基因 转录 20 50 | 108 拷贝 基因 转录 5 20 105 WAT TR Ft | 1~5 >104 同位 标记 基因 50 75 没有 拷贝 基因 转录 20 50 没有 HERAT RR FT 5~10 没有

TE: 数值 毫升 杂交 实际 标记 表示 标记 敏感 同位 标记 毫升 杂交 通常

14.2.6 (G+C) 影响 稳定 〈G) “〈C)

形成 仿 GC 热力 - 尿 CAT) 稳定 . 174 .

14 “核酸 杂交

因为 形成 ,(G C) 含量 重要

杂交 PCR 实验 设计 ,(G C) 含量 稳定 方面 重要 Tm=0. 41X(G+C)8H+4+69. 3

45 OM Ge SWE SE SE A Hf ER SE AY oP Ee (Matmur Doty,

1961).

(G+C) 含量

14.2.7

许多 推荐 杂交 商用 试剂 推荐 获得 完美 接近 完美 配对 完全 配对 严格 杂交 迅速 形成 相应 形成 配对 研究 生物 突变 自然 现象 设计 错误 阻碍 杂交 足够 温度 阻止 杂交 进行 1lkb), 标准 杂交 @ 效果 注意 作为 引物 杂交 结果 降低 杂交 温度 降低 杂交 严谨 杂交。 杂交 温度 Tm 容忍 序列 依赖 温度 程度 杂交

14.2.8 复杂

杂交 复杂 杂交 互补 序列 许多 情况 使 如,Northern czzyc RET 检测 细胞 c-myc mRNA )。 使 含有 因为 明确 ), 复杂 杂交 动力 情况 Tan 相近 序列 进行 杂交 适合 特定 温度 进行 严格 洗涤

14.2.9 Hitt

核酸 杂交 影响 表明 (Subirana Doty, 1966; Thrower Peacocke, 1968; Chang ,1974) 黏度 蔗糖 存在 ) 增加 速度 杂交 缓冲 普通 阴离子 葡萄 硫酸 Wahl ,1979;, Led- erman,1981), 增加 环境 黏度 因为 葡萄 硫酸 杂交 缓冲 物理 空间 使 占据 体积 众多 杂交 方案 Denhardt WR? (Denhart, 1966) 产生 现象 葡萄 硫酸 替代 减轻 许多 杂交 方案 葡萄 硫酸 引起 相关 严重 环境 问题

@ 标准 杂交 目的 杂交 缓冲 需要 孵育 “标准 ”是 影响 主要 变量 因为 杂交 速度 降低 相对 杂交 抵消 缩短 没有 那么 “典型 ”了

@ 100XDenhardt 溶液 : 2% Ficoll 400 (RPK), 2% 乙烯 吡咯 (PVP), 2%BSA V)

o 175:

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

14.2.10 酰胺

〈HCONH2: ) 干扰 形成 降低 稳定 因此 酰胺 线性 方式 降低 Ta (和 杂交 温度 ) 1 酰胺 ,Tm {KA 0.75~1.0°., i 〈G C) 含量 合作 螺旋 形成 lmol RR. Tm 减少 2.4~2.9°C (Blake Delcourt,1996) 42°C & 50% FA BERR AY FAR 缓冲 进行 杂交 实验 ; 典型 Ta 20C 温度 进行 利于 程度 配对 需要 改变 杂交 严谨 含有 缓冲 进行 RNA 增加 寿命 具有 定性

注意 酰胺 杂交 缓冲 缓冲 杂交 动力 预备 试剂 含有 表面 活性 试剂 结合, 这样 减少 背景 杂交 使 满意 它们 比较 昂贵, 专利 方面 限制

143 42 8B

许多 核酸 42°C 常用 杂交 进行 杂交 杂交 含有 50 酰胺 确切 杂交 进行 测定 需要 Tm 适宜 温度 进行 杂交 公式 显著 作用 讨论

14.3.1 RHA Tn

热力 稳定 公式 表示 DNA (DNA: DNA) (Bolton MaCarthy, 1962): Tm =81. 5°C +16. 6log[ Nat ]+41 xX a Ce et —0. 163% FA RE ARS —500/L DNA : RNA 杂交 〈Casey Davidson, 1977): Ta 79.8C 18.5 log[LNa+ ]+58. 4X (G+O)Fa+H1ise L(G+C)& # }? —0. 5 x FA BERR —820/L WH RNA (RNA: RNA) 4} (Bodkin Knudson, 1985). Tm =79. 8°C+18.5 log Nat ]+58. 4X (G+ Cyaan ae L(G+C) & & |? —0. 35 FA BERR & Ht 820/L JTJm 温度 ; (GEC) 含量 含量 百分比 ,moli LNa- ] 离子 浓度 ,mol/L; L 参与 实际 杂交 数目

14.3.2 Tu 计算 MPR, HUNK CA 13 ) T. 估算

胸腺 25C 4C (Itakura ,1984) 。176 -

/ 14 “核酸 杂交

Tm=4C(G+C)+2C(A+T)

DAVIE), RPKARARMRRHR (11 27 ) 含有 任何 1ImolML Nat (6XSSC) 杂交 缓冲 才能 Tm 温度 SOMME Res 因此 Ta 5@ 温度 利于 非常 严格 杂交 Ta 5 时, 完全 配对 形成 设计 序列 完全 配对 降低 杂交 严谨 容忍 必须 降低 杂交 温度

WMFKARARM 〈14 70 ),Tu 通过 公式 计算 (Sambrook Russell, 2001)

Tm =81. 5—16. 6CoglNay .])+41X (G+C)#B—600/N 。”N 序列 完全 配对 基本 原理 PCR 引物 设计 “〈 19 论述 )。

14.4 4 2 ¢ Northern > 45

核酸 杂交 主要 : MARR (也 封闭 ) 杂交 洗涤 (也 严格 洗涤 ) 检测 15 主题 完全 事情

普遍 使 杂交 商业 推荐 杂交 缓冲 杂交 产生 完美 印迹 ”。 事实 预测 核酸 动力 行为 杂交 方面 形成 参数 知识 价值 估量 使 完全 互补 系统 研究 使 核酸 检测 斑点 文库 尤为 重要 注意 需要 调整 杂交 特异 调整 温度 浓度 变量

14.4.1 PAR:

正如 12 讨论 必须 立刻 固定 上。 这样 保存 相当 : @ 相同 实际 杂交 平衡 ,@ 封闭 滤纸 (Meinkoth Wahl, 1984) HHH BADR TBM CF i) DNA 覆盖 没有 实验 RNA 样品 占据 任何 DNA RNA 样品 生物 相关 DNA 胸腺 DNA@。 方法 尤其 封闭 尼龙 使 蛋白质, DNA。 蛋白 DNA 封闭 耗费 适合 同位 背景 重要 实际 杂交 非特 异性 方式 固定 表面 产生 相当 背景 信号

现在 配方 确切 功能 特定 实验 推荐 笔者 实验 实验 比较 配方

@ DNA 作为 载体 封闭 10mg/ml 浓度 存储 DNA, 持续 穿 18 使 DNA 储备 保存 20C 使 适量 体积 煮沸 变性 10min,

“177

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

14.4.2 实验 方案 : KR)

@ 5XSSC 5XSSPE 湿 2 3min。

注意 SSPE 缓冲 SSC 酰胺 存在 情况 〈Meinkoth Wahl, 1984), AA SSPE 磷酸 模拟 核酸 磷酸 骨架 利于 封闭 检测 阶段 改进 背景 信号 策略 尤其 适合 尼龙 ) RNA 样品 核酸 磷酸 骨架 电荷 尼龙 电荷 。20XSSPE: 3mol/L NaCl, 200mmol/L NaH2PO,, 20mmol/L EDIA, pH 7.4。20XSSC: 3mol/L NaCl,0. 3mol/L 柠檬 pH 7. 0。

@ WEAR 42°C HEM HAY (250~1000pl/cm?) 杂交 缓冲 3 4h, 缓冲 含有 5XSSPE、5XDenhardt 溶液 、0.1% SDS、100wg/ml Here nN HEAR DNA 50% WA 离子 酰胺 顺序 配制 流程

a. FA ARERR AFA 45°C,

b. 单独 试剂 SSPE, Denhardt 溶液 SDS, RAMBLE 45°C. SDS 粉末 逐渐 溶解 液体

c. 干净 玻璃 试剂 DNA 体积 满足 体积 混合 5 7min。

d. 心地 煮沸 DNA SSPE、Denhardt 溶液 SDS 混合 混合 酰胺 旋转 。42C 缓冲 直至 使

方式 配制 原因 避免 变性 ? DNA 常用 体积 浓度 DNA 储存 方式 导致 DNA 事先 情况 酰胺 减缓 速度 混合 立刻 投入 使 ,100ml 缓冲 2 印迹 25ml 杂交 实验

注意 常规 杂交 平底 塑料 容器 进行 面积 面积 Rubbermaid HR WHAM Nalgene 配备 完全 合适 盖子 防止 方法 排除 气泡 进入 活性 杂交 缓冲 杂交 结束 溢出

注意 2 杂交 放置 轻柔 移动 (30~50r/min) MEAL, KMABRGR AR (Lab ©

Line), 使 缓冲 平稳 浸润 整个 表面 比较 数据

注意 3 过量 缓冲 杂交 利于 降低 ) 相互 作用 ,如 相应 减少 杂交 缓冲 体积 维持 浓度

@g) 杂交 缓冲 体积 100xl/cm2)。 许多 情况 杂交 缓冲 杂交 缓冲 相同 准备 工作 @@ )

14.4.3 Et Bett

使 需要 变性 通过 煮沸 提高 pH 方法 达到 变性 同位 体系 涉及 许多 变量 遵照 厂商 进行 变性 直接 标记 情况 进行

当心 同位素 标记 煮沸 变性 因为 产生 放射 蒸汽 替代 方法 GARR 50~100p1) 0.1 体积 1nolL NaOH, 37°C #F 10min & FE 放置 30min。 体积 超过 150nl (假设 杂交 缓冲 体积 5ml) 直接 杂交 缓冲 需要 进行 。,

。178 -

/ 14 核酸 杂交

14. 4.4 杂交

@ 杂交 缓冲 42 杂交 12 16h UK). Mim RAR mT.

注意 检测 稀有 mRNA 拷贝 基因 毫升 杂交 缓冲 5 20ng REM 1 5) X 105cpmyml

注意 2 ”如 质量 DNA 浓度 改善 杂交 动力

注意 3 标准 配对 25ng 同一 胶片 同时 存在 标准 实验 样品 直观 记录

14.4.5 杂交 严格 洗涤

根据 特性 杂交 产物 稳定 针对 调整 杂交 洗涤 注意 洗涤 ,严格 离子 强度 综合 体现 因此 通过 温度 降低 浓度 缩短 洗涤 方式

© 杂交 结束 除去 参与 杂交 产物 形成 aT.

a. im FAW 2XSSPE, 0.1% SDS 30s,

b. 室温 200 300ml 2XSSPE、0.1% SDS 15min,

c. 37°C FA 200~300ml fy 0. 1 X SSPE, 0.1% SDS YEAR 15min,

注意 如果 背景 洗涤 42~50C 0.1XSSPE、0.1%SDS 需要 按照 事先 进行 优化

© 2XSSPE 简单 放置 Whatman 足够 确保 缓冲

BERR 作为 检测 手段 尤其

Oa 技术 检测 直接 检测 缓冲 然后 按照 体系 厂商 进行 操作

Ob 使 同位 保鲜 显影 (第 15 论述 )

注意 ”如 显影 确保 湿润

14.5 参考 文献

Blake, R. D., and Delcourt, S. G. (1996). Thermodynamic effects of formamide on DNA stability. Nucleic Acids Res. 24, 2095.

Bodkin, D. K., and Knudson, D. L. (1985). Assessment of sequence relatedness of double- stranded RNA genes by RNA-RNA blot hybridization. J. Virol. Methods 10, 45.

Bolton, E. T., and McCarthy, B. J. (1962). A general method for the isolation of RNA complementary to DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 48, 1390.

Bonner, T. I., Brenner, D. J., Nenfeld, B. R., and Britten, R. J. (1973). Reduction in the rate of DNA reassociation by sequence divergence. J. Mol. Biol. 81, 123.

Britten, R. J, and Davidson, E. H. (1985). Hybridization strategy. In “Nucleic Acid Hybridization: A Practical Approach” (B. D. Hames and S. J. Higgins, Eds.), pp. 3-16. IRL Press, Washington, DC.

- 179 >

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Casey, J., and Davidson, N. (1977). Rates of formation and thermal stabilities of RNA:DNA and DNA:DNA duplexes at high concentrations of formamide. Nucleic Acids Res. 4, 1539.

Chang, C.,T., Hain, T. C., Hutton, J. R., and Wetmur, J. G. (1974). Effect of microscopic and macroscopic viscosity on the rate of renaturation of DNA. Biopolymers 13, 1847.

Denhardt, D. T. (1966). A membrane-filter technique for the detection of complementary DNA. Biochem. Biophys. Res. Commun. 23, 641.

Itakura, K., Rossi, J. J., and Wallace, R. (1984). Synthesis and use of synthetic oligonu- cleotides. Annu. Rev. Biochem. 53, 323.

Lederman, L. L. (1981). The rate of nucleic acid annealing to cytological preparations is increased in the presence of dextran sulfate. Anal. Biochem. 117, 158.

Marmur, J., and Doty, P. (1961). Determination of the base composition of deoxyribonu- cleic acid from its thermal denaturation temperature. J. Mol. Biol. 3, 584.

Meinkoth, J., and Wahl, G. (1984). Hybridization of nucleic acids immobilized on solid supports. Anal. Biochem. 138, 267.

Sambrook, J., and Russell, D. W. (Eds). (2001). “Molecular Cloning: A Laboratory Manual,” 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York.

Southern, E. M. (1975). Detection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis. J Mol. Biol. 98, 503.

Subirana, J. A., and Doty, P. (1966). Kinetics of renaturation of denatured DNA. I. Spectrophotometric results. Biopolymers 4, 171.

Thrower, K. J., and Peacocke, A. R. (1968). Kinetic and spectrophotometric studies on the renaturation of deoxyribonucleic acid. Biochem. J. 109, 543.

Wahl, G. M., Stern, M., and Stark, G. M. (1979). Efficient transfer of large DNA frag- ments from agarose gels to diazobenyloxymethyl-paper and rapid hybridization by using dextran sulfate. Proc. Natl. Acad. Sci. 76, 3683.

; Wk RAR)

180 -

1S tt Wm

15.1 £A RE

实验 终结 取决 实验 整个 实验 确保 样品 完整 极其 重要 标记 方式 系统 检测 杂交 重要。 标记 检测 方法 选择 主要 取决 需要 达到 灵敏 检测 方法 改进 改进 比较 现实 问题 需要 使 放射 方法

同位 标记 方法 方法 理想 放射 标记 核酸 印迹 杂交 13 许多 标记 方法 方法 常见 标记 方法 实验 减少 停止 同位 使 方法 克服 检测 相关 许多 优越 检测 方法 实用 习惯 逐渐 改变 方法 广泛

核酸 标记 检测 方法 抗体 识别 ) SHAH. 采用 技术 实验 ) 目标

© 确定 滤纸 确保 目标 稳定 配对

Q 杂交 杂交 特异 目标 定量

标准 检测 策略 : 放射 同位 技术 方法 放射 标记 放射 显影 检测 ) /或 Cerenkov 计数 同位 方法 检测 检测 检测 视频 捕捉 检测 标准 检测 方法

: 产生 X 射线 胶片 记录

G@ RIE: 波长 荧光 荧光

OQ : 荧光 转变 产生 荧光 产物 荧光

: 形成 颜色 沉淀 直接 沉积 目标

早期 同位 标记 检测 方法 常用 生物 标记 核酸 - 磷酸 检测 系统 检测 系统 转变 方法 通常 反应 检测 检测 方法 没有 广泛

181

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

严重 缺点 放射 显影 灵敏 许多 原先 反应 检测 方法 改进 适用 检测 许多 情况 检测 合成 标记 方法 检测 标记 方法 相同 技术 差异 杂交 方式 检测 试剂 检测 使 技术 射出 X 射线 胶片 记录

15.2 £446 &

放射 显影 简单 灵敏 光化学 技术 记录 样本 放射 标记 空间 核酸 研究 标记 固体 支持 溶液 目标 感光 乳剂 放射 接触 捕获 电离 辐射 光子 记录 稳定 放射 衰变 样品 感光 乳剂 结果 验方 显影 通常 整体 放射 显影 显影

领域 显影 常用 杂交 核酸 定量 放射 显影 电泳 技术 联合 使 定性 Northern 印迹 显影 ) 放射 同位 辐射 强度 估算 特异 配对 目标 RNA 数量 显影 通常 感光 乳剂 样本 切片 技术 放射 显影 直接 显微镜 操作 几何 形状 保持 标记 细胞 光学 显微镜 电子 显微镜 轻易 观察 计算 颗粒 )

整体 放射 显影 感光 医用 X 射线 胶片 塑料 薄膜 杂交 直接 接触 通常 直接 曝光 实验 核酸 保护 实验 丙烯 酰胺 琼脂 放射 同位 直接 检测 基质 LKodak 公司 放射 显影 胶片 0. 007in(lin=0.0254m)], 感光 乳剂 射线 光线 敏感 乳剂 卤化 混合 ) Hh 电离 辐射 释放 胶片 曝光 感光 乳剂 吸收 释放 电子 导致 形成 电荷 “斑点 ”>, ”吸附 形成 金属 。X 射线 胶片 曝光 合适 显影 浸泡 形成 含有 显影 颗粒 安全 光线 暗室 感光 乳剂 完全 光敏 通过 胶片 低温 曝光 增强 形成 形成 稳定 稳定 因为 存在 胶片 湿度 显影 直接 通过 视觉 观察 精确 通过 数字 显影 KLAN 15.1,

放射 显影 胶片 手工 冲洗 管用 方式 胶片 le], BUS. BER. EM. MA ROE, CBA, 胶片 感光 乳剂 曝光 卤化 金属 增强 形成 完成 显影 胶片 曝光 程度

@ 改编 Eastman Kodak 公司 @ 手工 冲洗 X 射线 胶片 ,Kodak D-76, D-19 GBX 显影 标准 Kodak 效果 . 182 -

15 “检测 原理

显影 温度 实验

背景 深浅 接受 程度 使 hee 胶片 曝光 显影 参数 标准 使 胶片

冲洗 具有 J 胶片 浸入 “终止 显影 显影 终止 J 容易 配制 1% 乙酸 溶液 ai 恰当 反应 非常 重要 显影 使 任何 曝光 胶片 I

模糊 注意 胶片 显影 HEE EAL 取出 显影 plats Tes

进行 合适 终止

显影 胶片 立刻 稀释 残存 试剂 残余 显影 操作 终止 1

显影 利于 延长 使 eg

fr. FEB AEP, DOR aE

曝光 卤化 室温 胶片 浸入 彻底 清洗 除去 胶片 冲洗 产生 胶片 比较 照片

冲洗 胶片 胶片 显影 判断 数据 差异 程度 实验 操作 引起 程度 胶片 冲洗 造成 冲洗 胶片 优点 ,实验 延长 显影 增强 信号 ;实验 减少 显影 降低 背景 减少 信号 特别 冲洗 胶片 优点 胶片 按照 统一 标准 冲洗 实验 比较

放射 显影 曝光 [参见 Bonner 综述 〈1987)] 感光 乳剂 选择 同位 放射 光谱 需要 质量 体系 放射 剂量 曝光 方法 没有 严格 规则 参数 必须 实验 根据 确定

15.2.1

15.1 X 线 又。 虽然 胶片 选择 实际 显影 ),X 线 冲洗 相同

Northern 印迹 印迹 技术 严谨 洗涤 完全 Whatman 3mm 滤纸 相应 装置 塑料 印迹 湿 状态 利于 放射 显影 通过 严谨 洗涤 除去 杂交 目的 杂交 完全 干燥 除去 湿润 清除 难得 几乎 除去 湿润 直接 X 射线 胶片 接触 使 胶片 导致 胶片 毁坏

15.2.2 X 线

X 射线 胶片 选择 取决 标记 使 放射 低能 放射 达到 常用 放射 显影 X 射线 胶片 Kodak XOMAT AR(XAR), 183

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

X-OMAT LSCXLS) BioMax 系列 胶片 开封 X 射线 胶片 存储 50 70F@, 射线 穿 防护 建议 保存 30% 50%% 相对 湿度 胶片 垂直 存放 存放

XAR 胶片 具有 灵敏 适用 放射 显影 操作 胶片 透明 基质 感光 乳剂 放射 显影 灰色 胶片 黑色 。XAR 胶片 规格 DXAR-5 胶片 包装 包装 运输 保护 胶片 避免 胶片 抽出 盒子 产生 静电 使 胶片 曝光 ;名 XAR-2 胶片 包装 密封

XLS 胶片 XAR 胶片 清晰 清晰 胶片 感光 乳剂 胶片 比较 选择 需要 达到 BioMax XAR 效果 胶片 黑色 胶片 显现 杂交 信和 较为 清晰 平均 曝光 XAR 胶片 2 XAR 胶片 首次 曝光 XLS 胶片 曝光

BioMax 胶片 放射 显影 X 线 。BioMax MS _. 适用 放射 显影 通用 胶片 。BioMax MR 适用 低能 B 255S、23P 14C 具有 胶片 BioMax Light 方法 设计 具有 灵敏 胶片 实验 使 BioMax 胶片 胶片 明显 优点 XAR 灰色 背景 使 胶片 极其 微弱 清晰 适用 目前 扫描 数字

15. 2 适用 放射 需要 胶片

灵敏 灵敏 |< > < > |

- BioMax MS 放射 显影 BioMax MS BioMax MR X-OMAT AR BioMax Light BioMax Light BioMax Light X-OMAT AR

15.2 适用 X 线 胶片 正文 刊登 Kodak 公司 允许

15.2.3 安全

虽然 显影 X 射线 胶片 光敏 暗室 容许 强度 便于 胶片 移动 快速 15W 普通 灯泡 颜色 使 光线 使 胶片 曝光 放射 通常 使 胶片 - 绿 光敏 使 红色 GBX-2 安全 8。 安全 非常 安全 照射 使 冲洗 胶片 模糊 情况 安全

@ 摄氏 温度 (C) 华氏 温度 ) 换算 公式 : 2 Kit} —32) @ 美的 快速 建立 简易 暗室 安全 GBX-2, Kodak No. 141 6627。 特点 便 携带 耐用 。184 -

FISH MMR

4ftCft=0. 3048m) 注意 安全 使 褪色 检测 方法 简单 安全 关闭 情况 冲洗 曝光 冲洗 胶片 模糊 表明 需要

安全 照射 重要 角度 任何 房间 冲洗 胶片 重要 必须 确保 门下 沿 屋顶 孔洞 屋内 放置 仪器 指示 电脑 显示 ) 光线

15.2.4 曝光

放射 曝光 取决 半衰期 放射 Geiger 计数 探测 靠近 探测 放射 强度 显然 3000cpm 放射 背景 环境 读数 放射 需要 曝光 缺乏 明显 信号 情况 立刻 灰心 丧气 放射 显影 拷贝 基因 mRNA 杂交 信和 通常 需要 3 曝光 观测 信和

XAR 胶片 室温 曝光 估计 背景 非特 杂交 信号 曝光 方案 参照 结果 放射 强度 通过 使 缩短 曝光 ; 放射 曝光 使 荧光 摄影 直接 曝光 放射 信号 增强 技术 温度 依赖 单独 低温 促进 直接 曝光 形成

15.2.5 tome

FEW A abet REP. 1 FR BE AT DAS oT ST AY Re. Se a BP CL CW RARE DN ARB TEM. TERA Be. Ae AAS SR EE SR DuPont Cronex Lightning Plus Intensifying Screen@, 适用 超过 1 曝光 荧光 物质 电离 辐射 转变 紫外 线 蓝光 Hit. Wr AeA Ss) 非常 适用 标准 放射 显影 曝光 必要 放置 没有 适应 “余辉 ”效应 使 冲洗 胶片 模糊 感光 乳剂 X 射线 胶片 面包 荧光 物质 必须 放置 白色, 没有 灰白 笔者 实验 避免 暗室 方向 荧光 物质 边缘 暗室 通过 触摸 确保 荧光 物质 杂交 80C) 进行 放射 显影 利于 转换 效率 因为 低温 胶片 反应 增强 注意 胶片 感光 范围 使 曝光 强度 明显 曝光 强度 增强 B We Me Con Ca MP) WR y HA BHM Cn 1) (Laskey Mills, 1977; Swanstrom Shank, 1978) 检测 MPH LS AMC

曝光 曝光 暗盒 正确 放置 非常

@ ,还 选用 稀土 制作 DuPont Cronex Quanta 常用 @ 放射 显影 ,?P 主要 DNA 测序 3S ?2P 需要 使 参考 文献 Zangursky (1991),

¢ 185

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

的。 胶片 放置 样本 胶片 同位 电离 辐射 直接 曝光 ;还 “感受 ”到 使 放置 样本 样本 降低 敏感 ) 使 使 B 粒子 放射 穿 胶片 散射 导致 B 粒子 撞击 相当 8 曝光 额外 扩散 造成 胶片 广泛 曝光 增加 敏感 缩短 曝光 降低

15.2.6 荧光

荧光 方法 原理 利用 同位 衰变 粒子 同位 衰变 释放 转变 使 X 射线 胶片 曝光 使 低能 放射 标记 3H (Randerath, 1970; Bonner Laskey, 1974). RHMRREAKRHA MEARE ) 浸渍 荧光 ) 取出 干燥 进行 放射 闪烁 2,5 AAEM HIRAM CA) PPO) 闪烁 浸渍 改进 2”P II 检测 效果 增强 C 5 S 检测 * H 检测 信号 放大 作用 闪烁 浸渍 样本 80C 胶片 (Kodak X-OMAT AR) 曝光 确保 胶片 曝光 反应 线性 常用 常规 实验

15.2.7 胶片

增加 胶片 敏感 胶片 线性 曝光 反应 曝光 选择 胶片 进行 胶片 短暂 激发 启动 形成 光子 促使 形成 特别 适用 荧光 使 促进 形成 电离 辐射 形成 没有 什么 作用 X 射线 胶片 敏感

15.2.8 暗盒 规格

放射 曝光 合适 暗盒 决定 。Sigma 公司 乙烯 树脂 覆盖 曝光 暗盒 (Sigma No. E8635) 虽然 非常 精细 价格 便宜 广 使 建议 暗盒 放置 lcm 树脂 玻璃 B 实验 附近 身体 伤害 较为 常用 重量 比较 树脂 固定 暗盒 聚氨酯 胶片 持续 均衡 接触 制作 暗盒 真空 曝光 曝光 湿 存在 情况 实验 选用 暗盒 必须 确定 曝光 装置 适合 需要 放射 准备 曝光 装置 重要 暗盒 必须 固定 曝光 任何 哪怕 微小 使 失真 比较 简单 方法 塑料 固定 裁剪 暗盒 Whatman 滤纸 直接 粘贴 东西

+ 186 -

1 ”检测 原理

15.2.9 显影

曝光 胶片 依次 显影 仔细 清洗 转变 放射 显影 任何 X 射线 胶片 厂家 推荐 适用 显影 暗室 手工 冲洗 需要 任何 仪器 胶片 冲洗 自动 冲洗 胶片 80YC 进行 需要 胶片 温度 室温 打开 暗盒 冲洗 胶片 质量 实验 重复 比较 冲洗 胶片 流水 〈16 24C) 清洗 15min WE Ra BR 质量

15.2.10 ”放射 显影 : 推荐 方案

当心 ”对 涉及 同位 实验 必须 遵照 物质 ; 遵守 安全 规范 实验 危害 放射 操作 树脂 玻璃 进行

获得 意义 数据 必要 使 曝光 显影 同一 印迹 样本 采用 冲洗 方法 导致 结果 完全

(1) : 开始 曝光

© 严谨 洗涤 14 ) 杂交 What- man 3mm 滤纸 残留 缓冲

Q 塑料 避免 边缘 产生 塑料 确保 曝光 X 射线 胶片 湿

注意 ”潮湿 杂交 直接 X 射线 接触 导致 紧密 粘连 导致 杂交 胶片 作废

@ 塑料 杂交 10 15cm (Geiger) 计数 探测 放射 估计 放射 Northern 技术 检测 稀有 mRNA Southern 技术 检测 拷贝 基因 探测 “嘎嘎 ”计数 背景 探测 计数 标记 互补 标记 往往 探测 信号 探测 强度 信号 意味 背景 比较

REI (hig GBX-2 BRIT, Kodak No. 141 6627) 塑料 杂交 XAR-5 胶片 暗盒。 80C

(2) BSP I: 胶片 显影

@ 曝光 结束 80C 暗盒 使 温度 室温 使 自动 X 射线 冲洗 安全 打开 暗盒 胶片 使 操作 手工 冲洗 胶片 @ 操作

© 显影 9 事先 配制 存储 密封 显影 光敏 氧化 。Kodak 公司 推荐 使 Kodak GBX 显影 @。 笔者 实验 使 Kodak D-76

© 注意 : 避免 皮肤 接触 显影 物质 保护 装置 @ GBX 显影 固定 包装 〈( Sigma No. Z35,414-7)

187

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

显影 〈Kodak No. 146 4809) 托盘 显影 浸没 胶片 存储 显影 使 增多 氧化 虽然 理想 显影 透明 仍然 即使 冲洗 胶片 凑合 使 显影 作为 候选 方案 黄色 棕色 显影 完全 失效

© 准备 托盘 面倒 终止

@ 准备 托盘 面倒 (Kodak No. 197 1753) 显影 需要 事先 配制 保存 密封 胶片

@@ 暗室 物品 否则 黑暗 摸索 利于

@ 打开 安全 明灯 手套 胶片 胶片 便于 判别 胶片 方向 改变 杂交 相对 确保 塑料 杂交 没有 胶片 《〈 情况 )。

@ 胶片 浸入 显影 胶片 漂浮 显影 表面 显影 计时 摇动 显影 托盘 胶片 通常 60s 开始 2.5min 现时 记录 冲洗 胶片 参考 确定 标准 显影 实验 结果 非常 意义

显影 结束 胶片 显影 取出 浸入 终止 漂洗 20 30s。

GD 胶片 转移 托盘 摇动 托盘 观察 透明 5min 胶片 完全 透明 需要 5~10min,

D 打开 照明 心地 胶片 温水 流水 漂洗 15min 残留 物质 清除 干净。 这样 获得 质量 胶片 胶片

GD 曝光 胶片 干净 表明 背景 接着 进行 曝光, 80 放置 3 天。 重复 胶片 曝光 冲洗 胶片 背景 明显 胶片 杂交 轮廓 考虑 杂交 塑料 取出 : 进行 严谨 洗涤 9。 严谨 洗涤 方式 : 杂交 0. 1X SSPE, 0.1% SDS 溶液 55 60C 10 15min。 重新 杂交

(0 按照 生产 杂交 保存

15.3 同位

同位 方法 核酸 合成 杂交 检测 核心 标记。 标记 随后 定位 杂交 具有 重复 灵敏 同位 方法 ,@ 通过 反应 促使 合适 ;, 检测 通过 反应 直接 形成 沉淀 物质 X 射线 胶片 记录

@ 使 洗涤 需要 杂交 封闭 随后 进行 结合 合适 反应 比较 建议 os 188 *

步骤 识别 严谨 洗涤 尽量 充分 避免

15 检测 原理

显影 检测 直接 检测 杂交 沉淀 结果 优点 接触 放射 材料 存在 同位 问题 减少 分钟

许多 生物 试剂 产品 生产 厂商 研发 许多 基于 同位 标记 检测 同位 检测 方法 原理 主要 依次 系列 试剂 生物 (Bio) (DIG), KIER (FL) 直接 连接 形成 “分 明治 ”, 增强 (ECL) 系统 (Amersham Biosciences,Piscataway,NJ) 同位 方法 进行 严谨 严谨 洗涤 浓度 SDS 溶液 洗涤 干净 容器 进行 确保 没有 残留 活力 )

15.3.1 生物

生物 溶性 维生素 容易 连接 许多 生物 生物 方式

@ 生物 传统 随机 引物 平移 聚合 〈PCR), 生物 进行 作为 dTTP Bio-11-dUTP®, AiA Bio 表明 生物 11 原子 连接 Bio-21-dUTP 标记 DNA。 ,Bio- 16-UTP® Bio-21-UTP 标记 RNA。 生物 相互 作用 得, 缺口 平移 引物 PCR 生物 效率 。Bio-11-dUTP 权衡 标记 效率 检测 灵敏 选择 广泛 DNA 合成

@O 生物 引物 简单 生物 方法 合成 进行 直接 PCR。 倾向 直接 订购 5” 生物 标记 担心 检测 标记 效率 问题 额外 费用 容易 通过 标记 效率 方便 平衡

@ 乙酸 生物 @ (Forster ,1985; McInnes ,1987;,Denman Miller, 1989) 材料 生物 生物 标记 DNA RNA。 催化 20~30min 便 完成 50 100 RH RP 生物 标记 方法 标记 生物 方法 标记 核酸 稳定

生物 〈Cimino ,1985; Wassarman,1993) 衍生 平面 320 400nm 光照 核酸 胸腺 脱氧 标记 效率 生物 修饰 生物 (Schleicher & Schuell, Keene, NH) 核酸 杂交 生物 合成 非常 容易

@ Biotin-11-2 -deoxyuridine-5 -triphosphate,tetralithium salt (生物 -11-2“- 尿 -5 -三 磷酸 )

@ Biotin-16-2'-uridine-5'-triphosphate (生物 -16-2“- 尿 -5'- 磷酸 )

© 乙酸 生物 : N-(5- -2- )-N'-(3- )-N'- -1,3- 氨基 丙烷 。Pierce Biotech- nology, Rockford, IL

° 189

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

失信 生物

标记 生物 20C 保存 取出 融化 沸水 立即 冷却 然后 杂交 缓冲

生物 亲和力 〈Kd 10 .5L/mol)。 蛋白 CM, 60000), 生物 结合 (从 鸡蛋 提取 ) 生理 pH 条件 带电 没有 利于 减少 非特 吸附 提高 检测 灵敏 许多 关于 生物 - 相关 技术 核酸 杂交 报道 《〈 实例 Leary ,1983; Wilchek Bayer, 1984; Hofman Finn, 1985), 检测 系统 生物 结合 TEMAS, HER 修饰 连接 AP 氧化 CARP). AP 相应 磷酸 ) 形成 BCIP NBT)9。HRP 氧化 〈HzO;) 存在 引发 反应 导致 [如 〈luminol) ] 形成 A five (Uh 4 -1- )

15.3.2 ihe

(DIG) 植物 提取 原料 。DIG(Roche Applied Science,Indianapolis,IN) 广泛 合成 同位 标记 生物 标记 方法 生物 ,DIG 标记 适用 随机 引物 合成 DNA 使 DIG-11-dUTP 合成 效率 体外 转录 合成 RNA 使 DIG-11-UTP。 DIG 通过 连接 连接 合成 5 DIG 标记 DIG 标记 BA PCR 产物 直接 方式 DIG 方式 。DIG 标记 通过 直接 杂交 切片 形成 进行 杂交 检测

杂交 严谨 洗涤 杂交 免疫 检测 检测 DIG 标记 连接 抗体 anti-DIG-AP anti-DIG-HRP) 检测 生物 系统 检测 原理 检测 沉淀 形成 通过 切割 相应 导致

15.3.3 荧光 标记

13 常用 荧光 Cy3 Cy5 标记 LE 标记 (FL-12-dUTP fil FL-12-UTP) 标记。 使 传统 荧光 标记 信号 产生 DIG 标记 相似 FL 亲和力 抗体 通过 抗体 AP HRP 进行 检测

直接 检测 杂交 FL FL 荧光 pH fA 影响 定量 测定 存在 问题 仪器 染料 克服 方法 FL 检测 使 FL 抗体

@ BCIP, 5--4-M-3-"JMR BEARER; NBT, *, 190

1S 检测 原理

15.3.4 直接

ECL 系统 (Amersham Biosciences, Piscataway, NJ) 特点 修饰 HRP 通过 连接 直接 连接 整个 杂交 随后 严谨 洗涤 存在 标记 检测 需要 任何 识别 立刻 使 快速 标记 检测 方法 广泛 使

15.3.5

利用 氧化 反应 转变 通过 反应 技术 提供 放射 同位 敏感 选择 15.1)。 技术 许多 传统 方法 Northern 印迹 技术 、Southern MwA. BRA (plaque lifts) 克隆 杂交 方法 基本 原理 基本 相同 基于 进行 杂交 检测 试剂 系统 复杂 程度 试剂 数量 产生 信和 操作 步骤 程度

15.1 放射 显影 衰变 检测 比较

放射 显影 同位 衰变 检测 灵敏

非常 锐利 清晰 双重 难以 曝光

检测 X 射线 X 射线 胶片

健康 危害 相对 非常

标记 稳定 稳定 存放 1 半衰期

杂交 曝光 检测 缓冲 曝光 需要 缓冲

标记 检测 影响 核酸 杂交 参数 放射 标记 同样 重要 适用 检测 标记 技术 适用 检测 系统 激活 试剂 存在 稳定 检测 放射 检测 同位 相当 “〈 放射 显影 曝光 ) X 线 片上 产生

15.3.5.1

体系 : 使 AP 使 氧化 9。AP 体系 通常 使 1, 2- 衍生 Lumigen PPD® (Lumigen, Inc. , Southfield, MI), CSPD CDP Star (Applied Biosystems, Foster City,CA)。 AP KD (E$ERR-AWCEERTED) 相继 研发 专利 1,2- AP (Bronstein McGrath, 1989) 催化 迅速 转变 产物 蓝光 (~470nm) 强度 AP 正比 15.3)。Applied Biosystems 提供 适用 许多 实验

@ 8 荧光 虽然 通常 报告 基因 检测 适用 检测 @ ,Lumigen PPD 4- -4-(3- ) WH (1,2- -3,2 -金刚 ) 磷酸 191

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

°° och, OCH; OCH, > 磷酸 (AP) fe 9 O Cl OPO;

lp hv CSPD® CS9D

15.3 磷酸 催化 磷酸 形成 阴离子 480nm 增强 强度

传统 适用 AP 系统 Lumigen PPD 试剂 : LumirPhos 530, 荧光 增强 光波 530nm; @Lumi-Phos 480, AA RIC RA, HA Lumi- Phos 530 相同 ; @Lumi-Phos Plus, 增加 敏感 光波 470nm。 9,10- Lumigen APS-5 (Lumi- gen,JInc) 敏感 10- ?mol AP 检测 入, 使 检测 产生 强度 色光 试剂 Lumi-Phos CCD 研发 试剂 使 电荷 耦合 (CCD) 相机 检测 信和

氧化 系统 HzO: 包含 反应 : HzOs RA HAE CO, ) 氢气 〈Hs ), 接着 @ (Matthews ,1985;

Thorpe Kricka, 1986) 相关 氧化 基于 反应 NH HRP oe +Nz+ ”伴随 氧化 反应 产物 3-2 ESB A

NH, O NH O 氮气 CN.) (图 15.4)。 杂交 杂交 通常 通过 X 射线 胶片 曝光 记录 放射 显影 相似 基于 氧化 测试 Lumigen PS-atto, Lumigen PS-2 Lumigen PS-3 (Lumigen, Ine. )

杂交 信和 系列 复杂 操作 操作 包括 标记 封闭 封闭 抗原 识别 结合 降解 相应 检测 形成 “分 明治 ”。 通过 -AP - ARP 反应 定位 。DIG 标记 通过 DIG 抗体 定位 检测 FL 标记 FL 抗体 抗体 通过 相应 记录 强度 立即 塑料 X 射线 胶片 曝光 整体 放射 显影 非常 相似 《〈 显影 )。 没有 使 同位 放射 显影

作为 检测 技术 常见 问题 背景 完全 信和 结果 通常 因为 : 杂交 检测 没有 ,@ 联检 测试 没有 封闭 ,@@ 开始 ;@ 佩戴 滑石 WEF GENT X 射线 胶片 ) 笔者 实验 杂交 严谨 遵照

O

BIA 3- 甲酸

15.4 PRR ACR CHRP) HzO 存在 反应 产生 强度 达到 急剧 减弱

@ 5- -2,3- -1 ,4- “192

1S ,”

厂家 推荐 检测 操作 程序 使 滑石 显著 提高 曝光 质量 敏感 重复

15.3.6 检测

许多 20 世纪 80 检测 系统 那样 原因 广 改进 “〈 ) 方法 系统 渐渐 冷落 值得 注目 例外 DIG 标记 系统 熟知 Gen- ius 试剂 〈Roche Applied Science,Indianapolis,IN), 杂交 检测 方法 独树一帜

检测 操作 试剂 通常 相似 AP 检测 通常 催化 BCIP 磷酸 NBT 反应 形成 沉淀 直接 沉积 杂交 反应 存在 没有 放射 显影 需要 进行 胶片 曝光 才能 完成 报道 表明 感度 原因 沉积 抑制 AP 活性 (Pitta ,1990) 原因 导致 活性 抑制 立即 影响 数据 且说 任何 问题 HRP 检测 步骤 利用 HzO* 4- -1- TMB®,

明了 相似 : 笔者 实验 检测 检测 集落 转移 〈HzO MAIER) HzO* 4- -1- 改变 没有 筛选 结果 产生 负面 影响 鉴定 克隆 标准 操作 方法 值得 推荐 事例 恰恰 明了 方法 相似

反应 检测 杂交 杂交 严格 检测 系统 相应 方案 杂交 杂交 准备

15.4 数字

目前 数字 许多 生物 实验 常规 手段 敏锐 精确 提供 尺度 软件 数字 需要 升级 售后 服务 花费 果实 研究 没有 仪器 进行 临时 电子 转换 步骤 X 射线 胶片 数字 独立 Gel-Pro (Media Cybernetics, Silver Spring, MD) 客观 测量

现在 许多 商家 提供 数字 系统 包括 著名 Archiver Eclipse 工作 (FOTO- DYNE, 11 11. 5) 系统 功能 齐全 扫描 湿 完全 取代 XX 线 系统 直接 印迹 捕获 需要 胶片 然后 进行 电子 存档

@ TMB: 3,3 ,5,5“ -四 193 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

敏感 主要 功能 印迹 获取 数字 仪器 20 世纪 80 当时 Molecular Dynamics 生产 先是 定量 放射 活性 设计 比较 熟知 Typhoon Storm (Amersham Biosciences) 定量 《例如 、SYBR 绿 、SYBR )、 放射 《具体 功能 ) 系统 扩展 技术 领域

方式 比较 独特 仪器 许多 优点 需要 射线 印迹 重复 使 产生 正确 维护 使 曝光 X 射线 胶片 1/10。 技术 完全 适用 核酸 任何 荧光 放射 标记 定性 定量 优点 敏感 射线 胶片 5 10 X 射线 胶片 意味 克服 胶片 固有 ”线性 范围 达到 5 logs 线性 范围 定量 较真 实地 反应 样品 差异 |

普及 问题 研究 使 需要 预约 登记 才能 使 仪器 实验 实验 研究 实验 使 往往 限于 早上

1

Bonner, W. M. (1987). Autoradiograms: 35S and 32P Methods Enzymol. 152, 55.

Bonner, W. M., and Laskey, R. A. (1974). A film detection method for tritium-labeled pro- teins and nucleic acids in polyacrylamide gels. Eur. J. Biochem. 46, 83.

Bronstein, J., and McGrath, P. (1989). Chemiluminescence lights up. Nature 338, 599.

Cimino, G. D., Gamper, H. B., Isaacs, S. T., and Hearst, J. E. (1985). Psoralens as pho- toreactive probes of nucleic acid structure and function: Organic chemistry, photo- chemistry, and biochemistry. Annu. Rev. Biochem. 54, 1151.

Denman, R. B., and Miller, D. L. (1989). Use of photobiotinylated deoxyoligonucleotides to detect cloned DNA. BioTechniques 7, 138.

Forster, A. C., McInnes, J. L., Skingle, D. C., and Symons, R. H. (1985). Non-radioactive hybridization probes prepared by chemical labeling of DNA and RNA with a novel reagent, photobiotin. Nucleic Acids Res. 13, 745.

Hofman, K., and Finn, F. M. (1985). Receptor affinity chromatography based on the avidin-biotin interaction. Ann. N. Y. Acad. Sci. 447, 359.

Laskey, R. A., and Mills, A. D. (1977). Enhanced autoradiographic detection of 32P and '25] using intensifying screens and hypersensitized film. FEBS Lett. 82, 314.

Leary, J. J., Brigati, D. J., and Ward, D. C. (1983). Rapid and sensitive colorimetric method for visualizing biotin-labeled DNA probes hybridized to DNA or RNA immobilized on nitrocellulose. Proc. Natl. Acad. Sci. 80, 4045.

Matthews, J. A., Batki, A., Hynds, C., and Kricka, L. J. (1985). Enhanced chemilumines-

ee method for the detection of DNA dot-hybridization assays. Anal. Biochem. 151,

McInnes, J. L., Dalton, S., Vize, P. D., and Robins, A. J. (1987). Non-radioactive photobi-

otin labeled probe detects single copy genes and low abundance mRNA. Nat. BioTechnol. 5, 269.

- 194 -

15 检测 原理

Pitta, A., Considine, K., and Braman, J. (1990). Flash™ chemiluminescent system for sen- sitive nonradioactive detection of nucleic acids. Strategies Mol. Biol. 3(3), 33.

Randerath, K. (1970). An evaluation of film detection methods for weak B-emitters, par- ticularly tritium. Anal. Biochem. 34, 188.

Swanstrom, R., and Shank, P. R. (1978). X-ray intensifying screens greatly enhance the detection by autoradiography of the radioactive isotopes **P and '*°I. Anal. Biochem.

86, 184. Thorpe, G. H., and Kricka, L. J. (1986). Enhanced chemiluminescent reactions catalyzed

by horseradish peroxidase. Methods Enzymol. 133, 331. Wassarman, D. A. (1993). Psoralen crosslinking of small RNAs in vitro. Mol. Biol. Rep. 17,

143. Wilchek, M., and Bayer, E. A. (1984). The avidin-biotin complex in immunology. Jmmunol.

Today 5(2), 39. Zagursky, R. J., Conway, P. S., and Kashdan, M. A. (1991). Use of 33P for Sanger DNA

sequencing. Bio Techniques 11, 36.

CREF; RRA)

* 195 -

16 保护 定量 待定 mRNA

16.1 &AA EB

稀有 转录 产物 研究 生物 实验 频繁 重复 工作 。Northern 方法 转录 产物 检测 平时 方法 确实 提供 转录 产物 信息 特定 转录 转录 产物 数量 。Northern

ace ig anr ;

细胞 RNA 放射 标记 尾巴 RNA NY at RNA DNA 溶液 杂交

TO > wnat br S1 消化 | 杂交 核酸

A ”被

|

电泳 放射 显影

16.1 SI] 核酸 定量 RNA。 RNA 标记 序列 溶液 杂交 形成 稳定 杂交 特异 S1 核酸 消化 没有 参与 形成 杂交 RNA 电泳 消化 杂交 放射 显影 根据 结果 保护 片段 1; 消化 2 3 4: 标准 196

16 ”核酸 保护 定量 测定 特定 mRNA

灵敏 限于 因素 RNA Fan. MOREE 印迹 非特 交叉 杂交 特异 交叉 杂交 具有 载体 序列 根本 缺点 保证 完全 杂交 结合 完全 接触 实践 杂交 即使 实现 困难

克服 Northern 印迹 基本 核酸 保护 实验 保护 实验 定量 特异 转录 产物 非常 灵敏 精确 方法 方法 RNA 杂交 严谨 溶液 杂交 方式 进行 选择 细胞 RNA, 细胞 RNA、poly(CA)+ mRNA RNA 作为 方法 灵敏 常常 需要 poly(A)+ mRNA。 产物 随后 特异 核酸 消化 核酸 (如 DNA : RNA RNA :RNA ) 亲和力 ABA WENT. HE RNA 降解 保护 片段 乙醇 沉淀 回收 变性 丙烯 酰胺 显影 CR 16. 1 16. 2) 定量 方法 数量 推断 技术 改变 方案 降解 数量 计数 代替

凭借 溶液 杂交 优势 随后 参与 形成 序列 降解

AT gen 5 Fi oii tom {7 * ar i 细胞 RNA 放射 标记

ARIS Fe BARNA % ZL RNA DNA 严谨 溶液 杂交

ink pe | ,ottL*

JE 形成 杂交 y * AT

RNase 杂交 核酸 | 保护 片段 电泳 放射 显影

16.2 RNase 保护 RNA 标记 RNA 序列 溶液 杂交 形成 杂交 RNase 混合 保持 放射 显影 根据 结果 保护 片段 1: 消化 2 3; 实验 样品 4: 标准 S1 核酸 保护 “2797 -

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

增强 增强 常常 非常 显著 放射 ) 3 预期 获得 相对 传统 印迹 10 灵敏 重复 检测 5fg RNA@。 激酶 反应 5 放射 ) 标记 (>109cpm/ug), ) 精确 测定 转录 产物 5 末端 《Boor- stein Cralg,1989 ) 核酸 保护 测定 边界 (Weaver Weiss- man,1979)。 标准 Northern 定量 研究 转录 产物 灵敏 核酸 保护 检测 同样 少量 RNA 保护 显得 尤为 便利 保护 广泛 接受 独立 方法 验证 反应 (RT-PCR) 结果 鉴定 假想 转录 改变

16.2 基本

核酸 方法 定量 鉴别 特异 转录 产物 Northern 信息 同方 选择 主要 取决 特定 研究 解答 问题 核酸 SI (An- do, 1966; Vogt,1973) 绿 核酸 (Kowalski ,1976) #AIAK MAEVE (Chase Rich- ardson,1974a,1974b) 方法 包括 RNase A RNase Ti 特征 RNase (Zinn ,1983; Melton ,1984; Lee Costlow,1987) (McKnight Kingsbury, 1982; Jones ,1985; Kingston, 1988) 程度 代替 技术 ,S1 核酸 保护 RNase 保护 CRPA) 流行 技术 关键 它们 需要 18 19 )

提出 保护 基本 方法 描述 直接 针对 RNA DNA Sl 核酸 消化 保护 序列 (Berk Sharp,1977,1978) 方法 扩展 使 RNA 使 DNA 极其 重要 抑制 合适 杂交 温度 含有 浓度 酰胺 缓冲 进行

速度 简单 溶液 (Casey Davidson,1977)。 杂交 体积

核酸 浓度 使 杂交 完成 重要 酰胺 环境 倾向 产生 促进 RNA : DNA 形成 互补 DNA

因为 潜在 使 疑问 形成 预期 〈Tn ) 理论 DNA + DNA, RNA? DNA fil RNA : RNA 悬垂 ) 选择 除去 杂交 鉴定 “杂交 窗口 ?>, 产生 误导 信息

S1 核酸 真菌 Aspergillus oryzae 存在 蛋白 进行 廉价 RNA 绿豆 核酸 使 。S1 核酸 依赖 ”的 〈Ando,1966; Vogt,1973) 完全 配对 核酸 结构 具有 特异 DNA RNA 方式 降解 5/- 5 - 活性 定义 1 单位 37C ,lmin 生成 1wg BRAT

@ 放射 显影 认为 灵敏 方法 报道 核酸 保护 实验 检测 30fg RNA。 @ Co“ 作为 辅助 因子 (Vogt,1973),

198

16 ”核酸 保护 定量 测定 特定 mRNA

脱氧 核糖 核酸 降解 DNA 速度 降解 RNA 速度 5 。pH4. 5 左右 相对 离子 强度 @ 表现 核酸 活力 pH7. 2 基本 活力 (Linn Roberts, 1982), Sl 核酸 表现 定性 特征 (Ando,1966), 控制 温度 (37°C). MA. Sl 核酸 抵抗 包括 、SDS 尿素 变性 (Vogt, 1973; Hofstetter ,1976) 特性 增加 S1 核酸

尽管 具备 拥有 优势 使 Sl 核酸 潜在 困难 。S1 核酸 剧烈 @。 研究 喜欢 PA Sl 核酸 保护 验方 需要 优化 使 范围 100 200U/ml 反应 体积 供应 ,S1 核酸 浓度 20 500U 活力 稳定 快速 降解 稳定 AT AU 特别 容易 S1 攻击 切口 产生 降低 活力 需要 pH 环境 导致 DNA

核糖 核酸 保护 (RPA) 基本 方法 16.2) S1 核酸 16. 1) 完全 相同 : 溶液 杂交 互补 研究 RNA 转录 产物 保护 RNA。 机制 角度 ,在 S1 核酸 ,NA RNA 使 SI 核酸 特异 DNA 8 RNA. #2 16.1 HRS Sl 核酸 RNase 保护 相近 技术 RPA RNase A RNase Ti 混合 进行 消化 使 RNA 。RNase A RNA 核糖 核酸 CHEE ARE) RO ARAN 3 (Py/pN) 产物 3- 磷酸, 3 -磷酸 RNase Ti 特异 核糖 核酸 3 端的 磷酸 (GpPN), RNase A 3 -磷酸 结尾 16. 2

16.1 Si BABA RNase 保护 比较

Si 核酸 保护 | RNase 保护 | | SI 核酸 保护

RNA RNA 背景 DNA RNA RNA Sl 核酸 RNase A+RNase Ti | 平均 灵敏 极限 100fg

RNase 保护

16.2 RNase A RNase T 比较

典型 储存 浓度 ik ©

2mg/ml Mise RNA

HE 4d F AYERS CC A UD 5 WR 3 端的 磷酸 (Py/pN) ; 3 -磷酸

A) FAY He ee EK EF Rs WE DY 10U/pl RNA Wm We 3' 磷酸 (GPN) ; 3 -磷酸

© 消化 进攻 RNA。

RNase A

Aspergillus oryzae ; 克隆 基因 Esche- richia coli 表达

RNase T)

@ 使 浓度 实验 溶液 离子 强度 限制 DNA 产生 缺口 使 浓度 观察 缺口 。200mmol/L NaCl (Vogt, 1973) pH pH 抑制 DNA 缺口 形成

@ Sl 核酸 剧烈 降解 特性 mRNA 转化 互补 DNA(CcDNA)。Gubler Hoffman (1983) 建立 广 方法 改进 cDNA 合成 效率 制备 cDNA。 PCR 怎样 合成 cDNA

“997。

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

策略 角度 核酸 保护 反应 反应 试管 使 流行 想法 呈现 相似 热力 行为 保护 片段 同时 产生 保护 片段 现在 单一 16. 3).

i=

KX em = R ak 保护 SKE (nt) = = at zz 片段 (nb c-myc (381) 249 = .. $2 B-actin (334) -_ c-myc (326)

me | p53 (265)

P| B-actin (245) Jun B (228) a Egrl (220) Ras( 180)

cyclophilin(165) : Jun B (146)

cyclophilin(103)

16.3 10pg RNA 50000cpm 杂交 核酸 消化 产物 6 酰胺 电泳 80C 4h 检测 杂交 Ambion MAXscript 试剂 [o-32P] UTP (800Ci/mmol, 10mCi/ml) 5 反应 体系 标记 纯化 合适 UTP. ¥% cyclophilin

Gactin 放射 ) 降低 原来 志和

16.3 选择

产生 问题 通过 使 核酸 避免 完整 体外 转录 系统 迅速 特定 序列 现在 常用 制备 方法 核酸 保护 )。 选择 方法 包括 合成 克隆 M13 载体 方法 PCR, 方法 比较 使 问题 严谨 配对 仍然 存在

体外 转录 几乎 少量 转录 模板 DNA。 存在 DNA 模板 临近 载体 序列 杂交 保护 S1 核酸 造成 杂交 放射 显影 情况 降低 参与 形成 RNA + RNA DNA : RNA 自由 浓度 杂交 溶液 程度 减弱 现象 完全 消除 它们 除去 载体 序列 通过 电泳 DNase I 消化 理想 方法 除去 模板 保持 检测 灵敏 实现

Northern 核酸 保护 主要 放射 显影 观察 Northern 信号 代表 转录 产物

cmyc mRNA 2. 4kb。 转录 * 200 -

16 核酸 保护 定量 测定 特定 mRNA

产物 预期 现在 核糖 RNA (rRNA) 18S rRNA 保护 产生 杂交 没有 直接 参与 杂交 形成 消化 常会 16.4)。 保护 Northern 容忍 RNA 样品 降解 识别 ;, 转录 产物 单个 导致 标准 Northern 计划 周全 实验 核酸 消化 杂交 BE BRP WHE) 杂交 模板 ) 标准 实验 电泳 轻易 核酸 差异 10

纯化 RNA 紫外 吸收 siamese CN

校正 定量 RNA ROOT

|

RY = i \\ ”在 溶液 杂交 is = a it

ee | St 1, 保护 片段 * | Re he a i 标记 { 放射 显影 SA

= 推断 保护 片段 转录 产物 推断 转录 产物

16.4 Sl 核酸 保护 传统 Northern 特异 RNA 转录 产物 比较

标记 方式 需要 严格 考虑 试图 鉴定 转录 产物 标记 〈5 3 ) 鉴定 使 标记 直接 参与 杂交 形成 标记 消化 使 杂交 探测 使 连续 标记 沿 整个 标记 ) 减轻 问题 150 450

正如 指出 容易 通过 体外 转录 : RNA HK 操作 需要 RNase 技术 ; 放射 使 辐射 裂解 92。

@ 辐射 裂解 放射 标记 携带 标记 降解 现象 使 非常 标记 1 10"cpm/pg) 使 储存 常会 现象 201

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

完整 片段 产生 增强 背景 非特 异性 杂交 建议 研究 使 检查 完整 ) |

16.4 £¢e #&

标记 方法 建立 随后 杂交 参数 保持 核酸 保护 使 核酸 保护 重复 灵敏 建议 因为 核酸 保护 试剂 容易 试剂 形式 获得 步骤 必须 调整 优化 流程 常常 反应 常常 需要

© 检测 RNA 群体 特定 mRNA 精确 方法 溶液 滴定 系列 特定 RNA 样品 杂交 反应 存在 改变 RNA 同比 改变 信号

© 稳定 形成 肯定 核酸 保护 表现 行为 详细 信息 尝试 50 杂交 温度 5C、 10C 范围 ) 重复 检测 确定 合适 严谨 足够 容许 杂交 形成 引起 杂交 调整 杂交 温度 Ta 5C。 温度 估算 依赖 特性 RNA DNA: RNA 具有 同样 检测 RNA DNA 严谨 杂交 14 )

G@) 关于 稳定 AU 域内 稳定 导致 完全 杂交 降低 信号 程度 通过 降低 杂交 缓冲 酰胺 减轻 困难 牺牲 特异 报道 准备 消化 反应 稀释 杂交 混合 15 温浴 30min, 使 AU 完全 退 产生 非特 伴随 杂交 体积 消化 照常 进行

DQ 必须 使 杂交 平衡 完全 实验 方案 ) 建议 核酸 浓度 帮助 通过 载体 RNA (如 廉价 酵母 RNA、 tRNA ) 实现 特定 反应 产物 进行 S1 核酸 消化 确定 杂交 反应 进行 情况 杂交 信号 强度 增强 达到 完全

© 正式 核酸 消化 必须 方式 进行 S1 核酸 尤其 考虑 因素 。S] 核酸 剧烈 ;但 幸运 活性 差异 问题 果实 问题 Sl 核酸 使 完全 降解 影响 杂交 信和 号。 清楚 准备 S1 核酸 活性 价值 实验 样品 进行 S1 核酸 进行 活力 滴定 实验 帮助 生物 ,S1 核酸 保存 含有 50%% 合适 储存 缓冲 附带 10 反应 缓冲 1X 缓冲 50ommol/L 乙酸 (pH4.5)、280mmol/ L NaCl, 4mmol/L ZnSO MI 5% Hh, BENE TE 37 进行 RNase 立即 RNase 混合 滴定 优化

©) 核酸 保护 定量 转录 产物 常见 问题 使 转录 产物 202 -

16 ”核酸 保护 定量 测定 特定 mRNA

设计 相对 转录 产物 转录 产物 均一 产生 预期 杂交 显影 明显 转录 CRNA 先进 减轻 问题 实验 样品 单独 电泳 消化 确定 明智

16.5 困难

核酸 保护 建立 S1 核酸 活性 比较 剧烈 RNase 容易 控制 产生 背景 现象 原因 自己 生产 质量 控制 保证 使 表现 良好 现在 宁愿 完整 系统 系统 测试 确保 正确 使 表现

现在 伴随 实验 困难 仍然 存在

@ 背景 使 试剂 问题 严重 背景 常常 因为 完全 消化 引起 保护 片段 背景 污点 正常 背景 错误 RNA 退 “〈 ) 杂交 温度 温浴 温浴 使 RNA 重新 形成 结构 使 非特 序列

使 降解 RNA 降低 识别 破碎 (由 辐射 裂解 核酸 降解 ) “噪声 ”。 杂交 混合 正常 )。 确实 杂交 降解 那么 额外 放射 “游离 形式 ) 边缘 折射 污点

检查 Sl1 核酸 活力 确保 厂商 确定 实验 RNA 完整

G@) 信号 核酸 保护 信号 原因 6

a. 没有 标记 足够 放射 末端 标记 标记 核酸 降解 标记 情况 绝对 确信 标记 杂交 形成

b. 实验 RNA 降解 保护 容忍 RNA 样品 降解 现在 RNA 样品 须要 确定 完整

c. 使 严谨 杂交 首选 方法 降低 杂交 温度 确定 杂交 渐渐 提高 温度 直到 确定 理想 “16.4 优化 建议 ”部 )

d. 沉淀 CRNA 样品 RNA) 没有 完全 重新 溶解 样品 参与 杂交 反应 开始 微微 湿润 沉淀 完全 杂交 缓冲 极端 情况 沉淀 乙醇 洗涤 丢失

203

RNA 研究 方法

RNA 鉴定 实验 指南

e 研究 细胞 表达 特定 目的 mRNA。 合适 引物 PCR 检测 使 研究 知道 转录 产物 存在 S1 核酸 保护 具有 尾巴 mRNA 少许 帮助 存在 潜在 负面 作用 过程 进一步 减少 目的 mRNA, 尾巴 RNA 排除 知道 方法 诱导 重复 诱导 目的 特定 基因 RNA 样品 杂交 测试 针对 相当 基因 测试 确定 RNA 样品 杂交

f. 粗心 使 正义

OQ 背景 实验 唯一 困难 优化 需要 调整 明确 杂交 反应 DNA。 体外 转录 常常 质粒 模板 序列 模板 序列 体外 转录 线性 进行 核酸 保护 实验 DNase 破坏 模板 实验 重要 ,RT-PCR EBSD. Wb, FEC Ho PE 足够 宽松 容许 相关 转录 产物 杂交 相关 mRNA 同一 相关 相当 (或 糟糕 ) 特征 依赖 相似 程度 数目 探究 杂交 温度 温度 提高 5C 程序 简单 改变 使 杂交 稳定 降低 消除 S1 核酸 变性 DNA TERR 原因 研究 喜欢 RNA 检测 RNA 序列

16.6 实验 : S1 核酸 保护 定量 产物

重要 S1 核酸 方法 Quarless Heinrich (1986) 方法 基础 改动 修改 方法 方法 WW > SILA koe Cig) 特定 mRNA, 100ug RNA 具有 尾巴 mRNA 2X10-5%。

J 手套 实验 使 RNase 材料 技术 RNA 容易 RNase 降解

注意 ”在 开始 实验 检查 RNA 样品 浓度 纯度 完整

@Q 微量 离心 20 30pg 细胞 RNA 足够 载体 RNA@, 使 达到 100ng. HMAKA 1X 10% cpm 碳酸 (DEPC) 反应 调整 100pw1。 准备 含有 载体 RNA 照应 没有 片段

注意 尽管 研究 50kg RNA 常常 10pg 细胞 RNA 细胞 RNA 足以 定量 mRNA 方法 S1 核酸 足以 消化 反应 体系 RNA ALE ET.

注意 2 严格 确保 摩尔 5 10 1X1loscpm

@ 载体 酵母 RNA 储存 0, 1mol/L NaAc, pHS5. . 204

2 缓冲 配置 mg/ml AAR BE. WA FEF 20°C .

] | |

16 核酸 保护 定量 测定 特定 mRNA

达到

@ MA pl pH5. 2, 3mol/L 乙酸 250p1 冰冷 95%% 乙醇 样品 20 放置

注意 实验 RNA 载体 杂交 缓冲 80YC 保存 1

Q@ 离心 收集 沉淀 70%% 30%DEPC ) WER. FS ) 离心 沉淀 选项 95 乙醇 沉淀 乙醇 保持 RNA 沉淀 微微 湿润

注意 使 真空 使 沉淀 完全 干燥 ,RNA 溶解

© 沉淀 重新 20nl Sl 杂交 缓冲 (80% 离子 酰胺 :40mmol/L PIPES, pH6.4; 400mmol/L NaCl; lmmol/L EDTA,pH8.0)。 样品 20 确保 完全 溶解

注意 必要 沉淀 杂交 缓冲 液体 增加 30pl,

注意 2 杂交 缓冲 事先 准备 Iml, 80'C

注意 3 果实 RNA 载体 事先 混合 没有 推荐 ) 沉淀 杂交 缓冲 20ml。

注意 4 检测 mRNA 必要 使 RNA 浓度 接近 溶解 极限 (Smg/ml=100pg/20ul), VI 促进 杂交

HERS 杂交 缓冲 80%% 离子 酰胺 标准 形式 DNA 动力 稳定 cRNA 40% 50%% 酰胺 代替 通过 温度 离子 强度 、pH 酰胺 浓度 调节

@ 85C RNA 样品 10min, 使 完全 变性

注意 ”必须 确保 样品 完全 变性 RNA 结构 影响 杂交 形成

@) 快速 离心 5s 杂交 混合 离心 50C 事先 确定 温度 3h。

HBR1 直接 根据 (RNA RDNA), RHMWKEM (G+C) 含量 改变 确定 方法 温度 范围 45 60C 缺少 特定 信息 50C 尝试

注意 “如果 体系 没有 载体 RNA 步骤 @@) 必要 延长 杂交 意味 达到 杂交 效率 需要 温浴

160nl DEPC 稀释 反应 混合 20wl 10 S1 核酸 反应 缓冲 预制 缓冲 配制 普通 10X (500mmol/L 乙酸 pH4.5; 2.8mol/L NaCl; 40mmol/L ZnSO,®; 50% HY).

@ 足够 S1 核酸 浓度 200 400U/ml。 体积 改变

注意 1 200mwl 消化 体系 超过 10pl S1 核酸 浓度 甘油 抑制 活性 核酸 单位 消化 达到 完全 消化

注意 2 实验 需要 优化 AU

@ 提供 保存 ZnCls 储备 必须 S1 核酸 消化 缓冲 ZnSO4 代替 - 205

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

切口 预期 情况 ,调整 方法 降低 使

O 短暂 离心 液体 收集 ,37C 温浴 1h。

@@ 体积 : 氯仿 : (25 : 24 : 1) : 氯仿 (1 : 1) 混合 反应 离心 2min

® 心地 (上 ) 转移 离心 1 20mg/ml 100pg/ml). PMA 2.5 体积 95%% 乙醇 沉淀 核酸 消化 反应 保护

® 离心 干冰 放置 15min 20C 2h。

@ 离心 收集 沉淀 风干 沉淀 真空 稍微 使 沉淀 于。

FA Spl TE Rep C1Ommol/L Tris; lmmol/L EDTA, pH8. 0) BUTI.

DNA Spl 2>< FA ER ERR RK (50% FREAK. 2X TBE 缓冲 ,0. 2% 1 Bt HE). 95°C HHA 3min, 2min, fA 1X TBE® EKA PRK, 5% ~6% WR ie BE AK / 8mol/L 尿素 电泳 250V 电泳 直到 染料 接近

方案 : 样品 体积 2X 缓冲 (125mmolL Tris,pH6. 8; 10% Him; 0.2%% ) 。5% 6%% 变性 丙烯 酰胺 根据 预期 保护 片段 使 iG He PAY BERK CSE 13, 13-1) 1XTBEe@ 电泳 缓冲 250V 电泳 直到 染料 沿 接近 底部

@ 电泳 结束 70C 显影 CLS 15 BE). 作为 使 塑料 覆盖 进行 显影

16.7 实验 方案 : RNase 保护 定量 转录 产物

方法 指出 RNase 保护 没有 规则 严谨 杂交 DNA S1 核酸 保护 实验 使 RNA RPA 提供 定性 识别 操作 程序 修改 事实 东西 试剂 形式 优化 操作 程序 灵敏 达到 0. lpg 放射 替代 标记 检测 方法 放射 sitllinhatiece 方法

D 手套 实验 使 RNase WHR. DIMER. SLAY RNA 自体 转录 RNA 容易 RNase 降解

Q 按照 体外 转录 系统 (如 Roche Applied Science Promega) 系统 Gilman, 1987; Sambrook Russell, 2001), 序列 噬菌体 纯化 RNA

QD 介绍 任何 方法 纯化 研究 细胞 RNA RNA。

注意 ”在 开始 实验 检查 RNA 样品 浓度 完整

@ 1X TBE 缓冲 : 50mmol/L Tris; 50mmol/L MAR; 1mmol/L EDTA,pH8. 0。 *。 206 -

16 ,” 核酸 保护 定量 测定 特定 mRNA

® 微量 离心 20~30ng 细胞 RNA 足够 载体 RNA, 使 100xg。 1X10scpm WERE. AA DEPC 反应 体积 调整 100x1。 准备 载体 RNA 照应 没有 保护 片段

注意 ”尽管 研究 50pg RNA 常常 10pg 细胞 RNA 细胞 RNA 足以 定量 mRNA 方法 RNase 消化 反应 体系 杂交 RNA

注意 2 严格 确保 5 10 情况 1X10scpm 达到

© MMA 11pl pH5. 2, 3mol/L 乙酸 250pl 冰冷 95%% 乙醇 样品 &t, —20CKEBUK.

HB 实验 RNA MRAM. AERC hE 80°C 保存 1

© 离心 收集 沉淀 70% CB 30%DEPC ) HER. FS ), 离心 沉淀 选项 95 乙醇 沉淀 乙醇 保持 RNA 沉淀 微微 湿润

注意 “不 使 真空 使 沉淀 完全 干燥 ,RNA 极其

© 沉淀 重新 20wl RPA 杂交 缓冲 〈80%% 离子 酰胺 40mmol/L PIPES, pH6.4; 400mmol/L NaCl; Immol/LEDTA,pH8.0)。 样品 20 确保 完全 溶解

FER 1 必要 溶解 沉淀 杂交 缓冲 液体 增加 30nl。

注意 2 ”杂交 缓冲 事先 准备 Iml, 存在 80'C

注意 3 果实 RNA 载体 事先 混合 没有 推荐 ), 沉淀 杂交 缓冲 体积 20nl。

注意 4 ”要 检测 mRNA 必要 使 RNA 浓度 接近 溶解 极限 〈5mg/ml 100kg/20pl), 促进 杂交

EBS ”杂交 缓冲 80%% 离子 酰胺 标准 形式 通过 温度 离子 BE. pH 酰胺 浓度 调节

85C RNA 样品 10min, 使 完全 变性

注意 ”必须 确保 样品 完全 变性 RNA 结构 影响 杂交 形成

@ 快速 离心 5s 杂交 混合 收集 离心 立刻 50 事先 确定 温度 3h。

注意 ”杂交 温度 直接 根据 (G+C) 含量 改变 确定 方法 温度 范围 45 60 缺少 特定 信息 55C 尝试

注意 2 如果 反应 体系 没有 载体 RNA 〈( 步骤 ) 必要 延长 杂交 意味 达到 杂交 效率 需要 温浴

@ 杂交 结束 240pl 稀释 反应 混合 30pl 10 X RNase 缓冲 (100mmol/L Tris, pH7.5; 3mol/L NaAc; 50mmol/L EDTA, pH8.0)。 5yl 2mg/ml RNase A All 5ul 10OU/pl RNase T).

注意 1 @ 20pl RPA 杂交 缓冲 比例 增加 10 X RNase 缓冲 。207 .

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

体积

注意 2 RNase A 浓度 近似 50pg/ml, RNase Ti 200Uyml。

OD 短暂 离心 液体 收集 ,37 温浴 1h。

© 体积 : 氯仿 : (25 : 24 : 1) : Af (1: 1) 混合 反应 离心 2min

QB 心地 CED 转移 离心 1pl 20mg/ml BE) 100pg/ml). AMA 2. 5 体积 95%% 乙醇 沉淀 杂交

@ 离心 干冰 放置 15min 20 2h。

® 离心 收集 沉淀 风干 沉淀 真空 稍微 使 沉淀 于。

® Fl Sul TE 42P¥ (10mmolML Tris; lmmol/L EDTA, pH8. 0) 沉淀

5il2X 酰胺 缓冲 (50% 酰胺 ,2XTBE 缓冲 ,0.2 )。 95°C ind 3min, 2min。 1XTBEe@ 5% ~6% AYR A Ms BERK / 8mol/L 尿素 电泳 250V 电泳 直到 染料 接近 底部

方案 ;样品 2X 缓冲 (125mmol/L Tris, pH6.8; 10% ; 0.2% ) 。5% 6%% 变性 丙烯 酰胺 电泳 根据 预期 保护 片段 使 合适 比例 13, 13-1) 1XTBE 缓冲 250V BRE AIR 沿 接近 底部

® 电泳 结束 70C 进行 放射 显影 15 )。 使 塑料 柯达 底片 进行 放射 显影

16.8

Ando, T. (1966). A nuclease specific for heat-denatured DNA isolated from a product of Aspergillus oryzae. Biochim. Biophys. Acta 114, 158.

Ausserlechner, M. J., Sgonc, R., and Wick, G. (1998). Chemiluminescence-based RNase protection assays for simultaneous quantification of procollagen mRNAs containing AU-rich regions. Bio Techniques 24, 366.

Berk, A. J., and Sharp, P. A. (1977). Sizing and mapping of early adenovirus mRNAs by gel electrophoresis of $1 endonuclease-digested hybrids. Ce// 12, 721.

Berk, A. J., and Sharp, P. A. (1978). Spliced early mRNAs of simian virus 40. Proc. Natl. Acad. Sci. 75, 1274.

Boorstein, W. R., and Craig, E. A. (1989). Primer extension analysis of RNA. Methods Enzymol. 180, 347.

Casey, J., and Davidson, N. (1977). Rates of formation and thermal stabilities of RNA:DNA and DNA:DNA duplexes at high concentration of formamide. Nucleic Acids Res. 4, 1539.

Chase, J. W., and Richardson, C. A. (1974a). Exonuclease VII of Escherichia coli. Purification and properties. J Biol. Chem. 249, 4545.

@ 1X TBE PR: 50mmol/L Tris; 50mmol/L MM; lmmol/L EDTA. pH8. 0, - 208 -

16 ”核酸 保护 定量 测定 特定 mRNA

Chase, J. W,and Richardson, C. C. (1974b): Exonuclease VII of Escherichia coli. Mechanism of action. J. Biol. Chem. 249, 4553.

Gilman, M. (1987). Ribonuclease protection assay. Jn “Current Protocols in Molecular Biology” (F. M. Ausubel, R. Brent, R. E. Kingston, D. D. Moore, J. G. Seidman, J. A. Smith, and K. Struhl, Eds.), pp. 4.7.1-4.7.8. John Wiley & Sons, New York.

Gubler, U., and Hoffman, B. J. (1983). A simple and very efficient method for generating cDNA libraries. Gene 25, 263.

Hofstetter, H., Schambock, A., Van Den Berg, J., and Weissmann, C. (1976). Specific exci- sion of the inserted DNA segment from hybrid plasmids constructed by the poly(dA)*poly (dT) method. Biochim. Biophys. Acta 454, 587.

Jones, K. A., Yamamoto, K. R., and Tjian, R. (1985). Two distinct transcription factors bind to the HSV thymidine kinase promoter in vitro. Cell 42, 559.

Kingston, R. E. (1988). Primer extension. Jn “Current Protocols in Molecular Biology” (F. M. Ausubel, R. Brent, R. E. Kingston, D. D. Moore, J. G. Seidman, J. A. Smith, and K. Struhl, Eds.) pp. 4.8.1-4.8.3, John Wiley & Sons, New York.

Kowalski, D., Kroeker, W. D., and Laskowski, M. (1976). Mung bean nuclease I. Physical, chemical, and catalytic properties. Biochemistry 15, 4457.

Lee, J. J, and Costlow, N. A. (1987). A molecular titration assay to measure transcript prevalence levels. Methods Enzymol. 152, 633.

Linn, S., and Roberts, R. R. (1982). “Nucleases.” Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.

McKnight, S. L., and Kingsbury, R. (1982). Transcriptional control signals of a eukaryotic protein-coding gene. Science 217, 316.

Melton, D. A. Krieg, P. A., Rebagliati, M. R., Maniatis, T., Zinn, K., and Green, M. R. (1984). Efficient in vitro synthesis of biologically active RNA and RNA hybridization probes from plasmids containing a bacteriophage SP6 promoter. Nucleic Acids Res. 7, 1175.

Quarless, S. A., and Heinrich, G. (1986). The use of complementary RNA and S1 nuclease for the detection of low abundance mRNA transcripts. Bio Techniques 4, 434.

Sambrook, J., and Russell, D. W. (Eds.). (2001). “Molecular Cloning: A Laboratory Manual,” 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.

Vogt, V. M. (1973). Purification and further properties of single-strand-specific nuclease from Aspergillus oryzae. Eur. J. Biochem. 33, 192.

Vogt, V. M. (1980). Purification and properties of S1 nuclease from Aspergillus. Methods Enzymol. 65, 248.

Weaver, R. F., and Weissman, C. (1979). Mapping of RNA by a modification of the Berk- Sharp procedure: The 5’ termini of 15S B-globin mRNA precursor and mature 10S f- globin mRNA have identical map coordinates. Nucleic Acids. Res. 7, 1175.

Weigand, R., Godson, G., and Radding, C. (1975). Specificity of the $1 nuclease from Aspergillus oryzae. J. Biol. Chem. 250, 8848.

Zinn, K., DiMaio, D., and Maniatis, T. (1983). Identification of two distinct regulatory regions adjacent to the human £-interferon gene. Ce// 34, 865.

(RRA; 李洋 )

“209

17 MWRNAWM

17.1 基本 原理

RNA 方面 同位 转录 效率 既定 模型 系统 基因 行为 假设 论证 提供 关键 实验 方法 检测 基因 转录 效率 逃逸 定量 RNA Northern 提供 研究 均一 RNA (hnRNA) 途径 价值 工具 17. 1 传统 Northern 保护 逃逸 实验 〈RT-PCR) 比较

17.1 传统 Northern 保护 逃逸 实验 RT-PCR 比较

RNA | Northern 灵敏 | 检测 转录 相对 比率 ; 合理 设计 达到 伦比 ; 保持 染色 | 灵敏 ; ; 提供 伦比 解析 ; 允许 同时 研究 基因 ;| 取代 技术 ; 结合 Northern | RNA ; fit) RNA; , 检测 基因 转录 | 迅速 技术 ; RNA 相对 稳定 ; 溶液 杂交 杂交 | 转录 调控 满足 研究 监测 样品 完整 | 量化 ; 转录

灵敏 方法 ; 保护 片段 原始 | 技巧 ;| “与 方法 ,对 精确 变性 毒害 ; ; 复杂 非常 ; 反应 敏感 ; 需要 RNA 操作 ; 核酸 ,尤其 SI 核酸 | 杂交 ,没有 标记 | 污染 , 基因 耗费 ; ,难以 控制 ; RNA 标记 |DNA, 敏感 ; RNA 降解 | 精确 杂交 参数 |RNA 竞争 ; 必须 注意 遗留 污染 ;

; 方法 敏感 ; 标记 ,方法 | ”优化 检测 RNA 退火 . | 支持 转录 延伸

损害 定量 效果 “|

17.2 REx OED

关键 调节 调控 细胞 刺激 整体 细胞 测定 基因 表达

变化 目的 基因 哪个 受到 调节 生物 模式 体系 基本 目的 *。 210

17 RNA

调节 层次 转录 调控 转录 事件 调控 系统 初步 涉及 Northern 特定 RNA、 保护 聚合 (PCR) 相关 技术 12 16 19 20 )。 虽然 方法 信息 方面 ( RNA 细胞 细胞 BZ) 提供 定性 定量 数据 整个 细胞 裂解 制备 RNA 提供 关于 RNA 转录 速率 信息 提供 RNA 细胞 细胞 ) 方面 信息 阐明 基因 调控 细胞 生物 知识 必要 信使 RNA (mRNA) 信使 RNA 多, mRNA 半衰期 生化 环境 刺激 变化

因素 影响 mRNA 细胞 含量 翻译 包括 限于 ) 作用 序列 hnRNA 剪接 效率 转运 mRNA 蛋白 体系 潜在 基因 调控 调控

显现 17. 1) | 针对 基本 方法 研究 翻译 修饰 特定 基因 转录 转录

方法 完整 细胞 pues 标记 细胞 染色 转录 RNA 转录 转录 比率 转录 “图 17.1 信使 RNA (mRNA) 生物 标记 RNA 标记 RNA 成。 RNA 聚合 转录 基因 产生 纯化 互补 固定 DNA RNA ChaRNA), Bl mRNA BU EER (Marzluff, 1978; Marzluff Huang, 1984; Ka-

antic 实施 影响 细胞 裂解 nazawa ,2000), 非常 灵敏 测定 动物 产生 那些 积累 转录 植物 细胞 转录 速率 方法 代表 合成 比率 进行 细胞 状态 功能 17. 2) 方法 特定 克隆 DNA 片段 作为 转录 模板 (Manley, 1984; Kramer ,1987), 剖析 保证 完整 细胞 体外 忠实 转录 必需 因子 序列

实验 主要 优点 标记 同时 维持 转录 工厂 实验 产生 没有 剪接 RNA, RNA 转录 命运 清楚 逃逸 使 体系 反应 促进 转录 延伸 认为 事件 @。 特定 RNA 标记 程度 代表 特定 基因 序列 相对 转录 速率 )

@ 数量 巨大 没有 标记 RNA 竞争 干扰 合成 RNA 检测 方法 支持 物化 定量 别处 (Marzluff Huang, 1984, pp. 103-119)

* 219 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

收获 细胞

准备 实验 fo ( 变性 cDNA) |

|

纯化 RNA _—— cpm 标准

17.2 逃逸 实验 基因 相对 转录 比率 通过 完整 细胞 含有 放射 标记 UTP 磷酸 (NTP) 混合 测定

放射 显影 Cerenkov 计数 估计 同位 标记 方法 检测 既定 实验 数据 参与 转录 特定 基因 RNA 数量 直接 相关 目的 基因 相关 调控 序列 转录 效率 相关 细胞 RNA Northern 印迹 “17. 3.2 NP-408 缓冲 裂解 细胞 ”>》” 逃逸 实验 数据 评估 观察 基因 调节 方面 变化 FE RA ) 转运 mRNA 稳定 调控 )

逃逸 实验 允许 同时 检测 特定 基因 转录 活性 完整 细胞 相对 数量 进行 转录 技术 主要 优点 ”的 细胞 周期 任何 指定 转录 基因 RNA (在 方法 作为 ) 非常 复杂 8; 实验 转录 目的 RNA 序列 浓度 原因 方法 非常

D 标记 RNA 减少 杂交 溶液 )。

@ 延伸 RNA 连续 标记 产生 特异 活性 “与 标记 13 BE).

@ RNA:DNA DNA:DNA 合体 ,RNA : RNA 热力 稳定 允许 非常 严谨 杂交 洗涤 增加 |

实验 阶段 阶段 目的

D 细胞 支持 转录 延伸 完整

@ 存在 标记 磷酸 (NTP) 情况 延伸 转录 标记 初始 同时 维持 转录 装置 几何

QO 回收 标记 转录 标记 RNA 蛋白 DNA.

标记 RNA 特异 固定 DNA 杂交 使 互补

@ 洗涤 PP40 (Nonidet P-40), 目前 商品 Igepal CA-630, @ 复杂 作为 RNA 序列 ° 22 -

17 RNA 分析

DNA (cDNA) 标记 转录 杂交 同时 检测 基因 数目 没有 限制 © 放射 显影 /或 Cerenkov 计数 定量 估计 目的 基因 相对 转录 速率 目的 RNA 转录 RNA 17. 2 报告 典型 示例

17.2 细胞 细胞 形状 依赖

相对 转录 比率

CUA-1 形态 依赖

HT-1080 形态 依赖 HT-IFN® 形态 依赖

: 数值 反映 扁平 细胞 基因 特异 转录 培养 聚合 LHEMA] 转录 逃逸 放射 显影 (Farrell Greene,1992)

逃逸 实验 几乎 完全 依赖 完整 细胞 细胞 UTP 放射 标记 速度 关键 参数 标记 制备 细胞 标记 细胞 通常 直接 导致 活性 RNA 体外 培养 细胞 〈Marzluff ,1973, 1974) 必要 ) (Ernest ,1976) 细胞 必须 RNA 聚合 活性 记载 方案 标记 纯化 RNA WHER 使 保持 RNA 聚合 活性 方法 文献 记载 描述 Marzluff Huang, 1975),

通过 完整 细胞 缓冲 孵育 裂解 缓冲 含有 温和 离子 NP-40 (Price Penman, 1972; Greenberg, 1988); 含有 Triton X-100 缓冲 (Marzluff ,1973,1974) “PRA; RAE AK MM AK (Gurney Foster, 1977; Lund Paine, 1990) 获得 细胞 立即 标记 细胞 安庆 8 80 明显 离心

0. 92

17.3 实验 方案 : BEAK IB? CHE mRNA )

17.3.1 细胞 收集 细胞 制备

笔者 实验 标记 反应 细胞 保持 低温 获得 标记 效果 2 3 托盘 那些 常用 瓶子 ) 方案 培养 直接 放置 排除 必须 冷冻 工作 细胞 培养 100mm 150mm 培养 培养 培养 培养 收获 细胞 速度

d 细胞 培养 培养 培养

@ 方法 包括 细胞 甘油 溶液 干粉 缓冲 沉淀 细胞 K. @ 熟悉 试管 安全 操作 方法 寻求 方面 指导 实验 安全 必需 © 列举 方案 Groudine (1981) 、Nevins (1987) # Greenberg (1988) 方法 改进 * 213

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

注意 虽然 标记 反应 5X105 细胞 较为 明智 〈3 5)X10 细胞 达到 标记 标记 必须 达到 足够 (cpm), 利于 杂交 测量 RNA 样品 血细胞 方便 细胞 细胞 进行 计数

@ 10 15ml 冰冷 磷酸 生理 盐水 (PBS) 洗涤 细胞 PBS, 1ml 培养 容器

@ 细胞 橡皮 温和 迅速 收获 细胞

注意 细胞 消化 收获 8。 笔者 历经 曲折 认识 方法 消化 降低 标记 效率

注意 2 虽然 ”细胞 群体 hnRNA 合成 受到 细胞 形状 扭曲 影响 细胞 形状 扭曲 疑问 伴随 蛋白酶 消化 〈(Ben-Zerev ,1980) 产生 使 微小 形态 变化 使 RNA 合成 显示 强烈 形态 反应 (Benecke ,1978;, Wittelsberger ,1981) 原因 放置 培养 细胞 导致 细胞 形状 扭曲 方法 强烈 推荐

注意 3 ,4C 500X¢ 离心 5min 收集 悬浮 细胞 10ml 1 PBS 细胞 步骤 收集 完全 步骤 @。

© 细胞 转移 离心 15ml 30ml 核酸 Corex 玻璃 ) 4°C, 500X g 离心 5min 收集 细胞 完全

注意 1 转移 细胞 /或 细胞 试管 离心 离心 试管

注意 2 离心 转子 保证 合适 橡皮 支撑 玻璃

17.3.2 NP-40 缓冲 细胞

© 细胞 常温 振荡 5s 使 细胞 松散 NP-40 缓冲 (10mmol/L Tris, pH 7.4; 10mmol/L NaCl; 5mmol/L MgClh; 0.5% NP-40), [aati #0 fei. UKE 5min。

注意 技术 避免 形成 细胞

@ 4°C, 500X g 离心 5min 收集 细胞

注意 ”如果 需要 RNA 细胞 纯化 Northern 继续 细胞

@ 按照 步骤 @ 4ml NP-40 缓冲 细胞 。4\C 、500Xg 离心 收集 细胞

舍弃 200 300pwl 甘油 储存 缓冲 (50mmol/L Tris, pH 8.0; 30% 甘油 ; 2mmol/L MgCl; 0. Immol/L 乙酸 ) AEH MEMO. AKA 立即 标记 密封 细胞 安庆 80OC 保存

17.3.3 细胞 方案 : 培养 细胞 细胞 @

方法 缓冲 裂解 细胞 吸入 黏稠 缓冲 当中 制备 细胞 方法 通过 阻止 细胞 离心 底部 保持 细胞 完整 细胞 细胞 密度 特定 细胞 必须 优化 便 纯化 细胞

@ 蛋白 消化 方案 附录 10。 @ Marzluff Huang (1984) 方法 修改 .214 -

17 RNA 分析

细胞 培养 100mm 150mm 培养 培养 培养 培养 收获 细胞 速度

@ 细胞 培养 细胞 培养

注意 (3 5)X107 细胞 产生 足够 cpm, 利于 杂交 测量 RNA 样品 血细胞 方便 细胞 细胞 进行 计数

@ 15ml 冰冷 磷酸 (PBS) 洗涤 细胞 PBS, 1ml CARA A at.

G@) 细胞 橡皮 温和 迅速 细胞

HB 1 消化 收获 @。 消化 降低 标记 效率

注意 2 虽然 ”细胞 群体 hnRNA 合成 受到 细胞 形状 扭曲 影响 细胞 形状 扭曲 疑问 伴随 消化 (Ben-Ze’ev ,1980) 产生 细胞 使 微小 形态 变化 使 RNA 合成 显示 形态 反应 〈Benecke ,1978;, Wittelsberger ,1981)。 原因 放置 培养 细胞 导致 形状 扭曲 方法 强烈 推荐

注意 3 室温 500Xg 5min 收集 悬浮 细胞 : 冰冷 PBS 洗涤 细胞 收集 完全 步骤 @

® 细胞 转移 合适 离心 15ml 30ml 核酸 Corex KBE), Bi 500Xg 离心 5min 收集 细胞 完全

HB 1 转移 细胞 /或 细胞 试管 离心 离心 试管

注意 2 离心 转子 保证 合适 橡皮 玻璃

@ 1X10" 细胞 /ml 密度 缓冲 [0. 32mol/L FERF; Smmol/L CaCl ; 3mmol/L 乙酸 ; 0.lmmol/L EDTA; 0.1% Triton X-100;,lmmol/L = 3 St ip HF HE (DTT); 10mmol/L Tris, pH 8.0] 细胞

HER APT AC A HE. (LE EET FEM DTT Triton X-100。

© 细胞 紧密 结合 10

注意 ”通常 导致 标记 原因 使 结合 紧密 释放 细胞

OO RNA 离心 底部 1/3 放置 缓冲 (2mol/L 蔗糖 ;3mmol/L 乙酸 ; 1mmol/L DTT; 10mmol/L Tris, pH 8.0) 缓冲 使 离心 适量 缓冲 稀释 使 体积 足够 充满 离心 2/3 体积 心地 混合 缓冲 垫上

4C、30000Xg 离心 45min 收集 细胞

@ 108 细胞 /ml 密度 储存 缓冲 〈40%% ,5mmol/L 乙酸 ; 0. IlImmol/L EDTA; 5mmol/L DTT; 50mmol/L Tris, pH 8.0) 细胞

QO 立即 细胞 细胞 80Y7C 保存 否则, 立即 标记 方案

17.3.4 细胞 方案 : 完整 @ 按照 标准 方法 获得 冰冷 0.14mmol/L NaCl, 10mmol/L

@ 蛋白 消化 方案 10。 @ Derman (1981) Marzluff Huang (1984) 方法 修改

e 215 =

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

Tris (pH 8.0) 溶液 洗涤

@ 冰冷 裂解 缓冲 (0. 32mol/L HK HF; Smmol/L CaClz; 3mmol/L GRE; 0. mmol/L EDTA; 0.1% Triton X-100; Immol/L DTT; 10mmol/L Tris, pH 8.0) #4) 5ml 裂解 缓冲

@ 迅速 纱布 碎片

® 紧密 结合 10 20 Syl 显微镜 显微镜 观察 细胞 裂解 程度

© 1 2 体积 〈2.0molL HAM; 3mmol/L GRE; 0. 1mmol/L EDTA; lmmol/L DTT; 10mmol/L isis pH 8.0) Am. RNase 离心 底部 1/3 相同 缓冲 缓冲 混合 缓冲 热土 确保 使 离心 离心

© 4°C, 30000 g 离心 45min 收集 细胞

@ VA 108 细胞 /ml 密度 甘油 储存 缓冲 (25% 甘油 ;5mmolL GBR; 0. lmmol/L EDTA; 5mmol/L DTT; 50mmol/L Tris, pH 8.0) 细胞

立即 细胞 细胞 安放 80C 保存 否则, 立即 开始 标记 方案

17.3.5 转录 标记

注意 融化 细胞 配制 2 缓冲 非常 重要 使 融化 细胞 使 标记 效率 降低

® 配制 2 反应 缓冲 (10mmol/L Tris, pH 8.0; 5mmol/L MgClz ;, 300mmol/L KCl; lmmol/L ATP; lmmol/L CTP; lmmol/L GTP; 5mmol/L DTT).

注意 ”理想 情况 任意 零售 那里 NTP 储存 使 反应 足够 0. 5mmol/L EDTA 溶解 使 达到 100mmol/L; 调整 pH (AB 7.0~ 8.0。 单独 NTP 储存 储存 保存 20C 。NTP 浓度 50pmol/L, 工作 浓度 0.5 1. Ommol/L 范围

@ 200pl 细胞 200p) 2 反应 缓冲 使 200pl 2 缓冲 200pl 融化 细胞

注意 1 实验 标记 细胞 200pl 2 缓冲 观察 2 缓冲 融化 细胞 融化 洗涤 融化

注意 2 细胞 黏稠 惊慌 细胞 仍然 完好 支持 转录 延伸 标记 〈〔(Marziuff Huang, 1975; Nevins,1987)。 减少 细胞 损伤 标记

@ 立即 10wl [e-32P] UTP 800 Ci/mmol, 10mCi/ml, ARK 26°C HEF 30min,

注意 1 标记 直接 冷冻 进行 制备 细胞 圆锥 丙烯 试管 标记 降低 方法 必然 产生 放射 照射 程度

@ 确切 浓度 研究 细胞 使 价值 材料 根据 测定 ; 通常 ff Jt 1. 8 2. 2mol/L

* 216

17 RNA

注意 2 实验 标记 标记 反应 (Lab-Line Instru- ments) 30~50r/min 摇摆 观察 注意 3 标记 温度 25 37 范围 变动 25 孵育 延长 1h, 37'C 孵育

0. 5h 增加 标记 程度 转录 延伸 方法 推荐 细胞 标记 37? 孵育 15min (Nevins,1987)

17.3.6 标记 转录 回收

@ 单独 RNA 试管 lml 〈500mmolL NaCl; 50mmol/L MgCl; 2.5mmol/L CaClz; 10mmol/L Tris, pH 7.4) 50n 1mg/ml RNase DNase 使 混合 。750pwl 混合 标记 细胞 试管

注意 缓冲 使 标记 反应 终止 余下 完整 细胞 破裂 增加 溶液 黏稠 染色 释放 硅烷 @ RNase 吸管 吸管 ) 安装 lml 结核 25 针头 DNA

注意 2 DNase 活性 溶液 含有 CaCh.

@ 37°C F KIRA W 5min。

EB FAA DNase I 目的 使 基因 DNA 片段 完全 降解 溶液 物理 操作 纯化 步骤 黏着 标记 RNA 降解 DNA 除去

@ MA 200pl 硫酸 (SDS)/Tris 缓冲 (5% SDS; 500mmol/L Tris, pH 7.4; 125mmol/L EDTA) 15pwl 20mg/ml fh) ABE K. 42°C HR 30min 保证 白质

1.25ml : 氯仿 : (25 : 24:1) 样品 。800Xg 离心 8 10min

© 试管 : 2ml 核酸 ) 3ml & 10% TCA® 60mmol/L 、15pl 10mg/ml 载体 RNA (如 廉价 酵母 RNA)。 45min。

注意 ;, 这些 沉淀 标记 RNA.

© Millipore Sampling Manifold (Millipore, Billerica, MA), AMHR PAA ie 沉淀 Whatman GF/A 玻璃 纤维 10ml 5% TCA, 30mmol/L 洗涤 2

注意 SM TCA 沉降 步骤 常会 导致 难以 接受 背景 杂交 即使 严格 难以 背景 方法 定量 关键 步骤

© 转移 玻璃 闪烁 1.5ml DNase 缓冲 [20mmol/L HEPES (自由 ),pH 7.5; 5mmol/L MgCh; 2.5mmol/L CaCl], tA 50ul 1mg/ml RNase DNase [ , 37°C ## FF 30min,

40pl 500mmol/L EDTA (pH 8.0) fl 70p1 20% SDS 终止 消化

@ 样品 60 保温 10min, 滤纸 纯化 RNA。 心地

O 玻璃 硅烷 参见 附录 8. @ TCA: 乙酸

° 217 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

转移 试管 @ 1. 5ml 缓冲 (1% SDS; 10mmol/L Tris, pH 7.9; 5mmol/L EDTA)

玻璃 闪烁 步骤 。65C 10min, 心地 回收 @@ 合并

@@ 体积 苯酚 : 氯仿 : (25 : 24 : 1) RNA 体积 氯仿

注意 ”两 情况 ,RNA CLE).

3ml) 转移 硅烷 @ RNase Corex 玻璃 ) 650wl 1mol/L NaOH, 孵育 超过 3min。

注意 ”有限 RNA 往往 提高 杂交 效率 〈Jelinek F, 1974). HAA 3min 降解 RNA 风险 降低 RNA 杂交 动力 步骤 步骤

® wA 1.5ml lmol/L HEPES (自由 ),pH 7.4 反应

0.1 3molL 乙酸 (pH 5.2) ( 500xl) .2.5 体积 冰冷 9%5 乙醇 ( 15ml) 沉淀 RNA。 20C

17.3.7 DNA 制备

® 目的 基因 DNA 序列 PCR 克隆 序列 质粒 方法 方法 限制 载体 DNA 片段 DNA 固定 尼龙 ; 然而 DNA 1. 0kb 保证 硝酸 纤维 固定 避免 使 硝酸 纤维 结合

@ 0. 1 体积 1mol/L NaOH 使 线性 DNA 变性 30min BY 37°C IRF 10min,

@ MA 10 体积 冰冷 6XSSC 缓冲 混合 pH fA.

® 印迹 变性 DNA 超过 15 20min。 6X SSC 15min 完成 杂交 避免 变性 样品 重新 退火

@ Minifold | (斑点 印迹 ) Minifold I ( 印迹 ) 42 B (Schleicher & Schuell,Inc. ), 开始 使 真空 9 )。 100 200pl 体积 吸取 2 5ng 预先 测定 质量 ) 变性 DNA 300pl 6 x SSC YE RET FL.

a. 通常 DNA 基因 极为 丰富 序列 核糖 RNA (rRNA) RNA (snRNA) 例外 DNA 方法 测定

i. 变化 RNA RNA 比例

li. 变化 DNA DNA 杂交 RNA 没有 任何 影响

ii. 没有 结合 DNA RNA 杂交 没有 杂交

b. 硝酸 纤维 DNA 结合 容量 80ng/cm2 克隆 质粒 DNA 没有 线性 载体 插入 片段 印迹 尼龙 尼龙 核酸 结合 400ng/cm2 使 载体 DNA 插入 片段

@ 玻璃 硅烷 参见 附录 8 *。218

#178 RNA

克隆 相同 载体 当中 尤其 重要 同等 质量 DNA 片段 《而 载体 插入 片段 质量 )。 标准 方式 必须 保证 观察 变化 真实 反应 转录 比率 没有 样品 印迹 导管 适量 线性 载体 DNA 插入 片段 载体 ) 载体 DNA 样品 方法 实现 DNA 样品 质量 标准

c. 因为 逃逸 实验 同时 检测 基因 转录 程度 价值 印迹 策略 印迹 垂直 目的 基因 DNA 序列 包括 “看 ”功能 基因 DNA, 基因 表达 规定 实验 变化 因此 体积 杂交 缓冲 极为 混杂 RNA

d. 斑点 印迹 装置 核酸 5min 然后 6X SSC 湿

e. 斑点 印迹 装置 (12.5mm2 ) 印迹 装置 使 样品 集中 (6mm2)。 印迹 数据 斑点 印迹 容易 量化 形状 使

f. 杂交 包括 合适 阴性 重组 载体 ) 阳性 《如果 )

g. 显示 方法 线性 关系 固定 DNA 样品 基于 测定 放射 〈cpm), 产生 标记 RNA 稀释 产物 单独 目的 DNA 杂交 信号 强度 反映 稀释 标记 RNA

© 按照 生产 DNA 固定 杂交 常用 紫外 〈UV) 光源 DNA 尼龙 硝酸 纤维 真空 80C 2h 核酸 方法 代替 65C 温度 1h 需要 真空 )。 立即 使 储存 低温 干燥 核酸 固定 固体 支持 详细 论述 12

17.3.8 杂交 RNA 制备

® 4C、10000Xg 离心 30min 回收 沉淀 RNA。 心地 乙醇 放射 RMD. BAM PA 70% (用 DEPC 稀释 95%% 乙醇 ) 洗涤 《如 ), 洗涤 乙醇 允许 短暂 试管

@ lmlTESe (10mmol/L TES, pH 7.4; 10mmol/L EDTA; 0.2% SDS) RNA 轨道 平台 100r/min 速度 振荡 样品 重新 溶解 RNA。

@ 样品 Syl 进行 lmin 计数 检测 cpm/ml。 cpm/ml TES 溶液 样品 均一 杂交 提供 几乎 相等 计数 ,cpmy/ml 平均 5X107 107 cpm/ml,

注意 FA cpm 标准 样品 基于 假设 ,RNA 合成 作为 细胞 状态 函数 没有 改变 特定 基因 必须 衡量 假设 细胞 状态 合理 实验 相同 数量 细胞

@ TES: N-tris (Fe FASE) -2- 硫酸 ° 219 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

@ DNA 序列 使 标记 RNA DNA. ig

© 杂交 直接 干净 5ml 闪烁 效率 重复 操作 进行 : DNA 心地 闪烁 底部 使 固定 DNA 管子

注意 ”这 杂交 方式 使 保持 浓度 方法 使 塑料 杂交 必然 造成 放射 污染

注意 2 保证 闪烁 RNase 建议 那些 管子 HzO: 浸泡 20min, 彻底 冲洗

© fA lml TES/NaCl (10mmol/L TES, pH 7. 4; 10mmol/L EDTA; 0.2% SDS; 600mmol/L NaCl) lml RNA 溶液 混合 2ml RNA Het IMD AH DNA 闪烁 65C 24 36h。 保管 完全 浸没 杂交

注意 “在 实验 杂交 方法 单个 闪烁 架子 常用 装载 15ml 离心 架子 65"C 轨道 孵育 平台 整个 杂交 (50~70r/min).

17.3.9 杂交 检测

@ 杂交 结束 65C 2XSSC 批量 洗涤 1h。

8ml 2XSSC Fil 121 10mg/ml RNase A 单独 玻璃 闪烁 含有 RNase A (0. 5pg/ml) RNase Ti (5U/ml) 2X SSC 消化 非特 RNA AF. 37° CHA 30min, 需要 摇动

注意 典型 RNase A 储存 2mg/ml,RNase Ti 5000U/ml。

© 37C 2xSSC 批量 洗涤 1h。 保证 它们 没有 完全 干燥 湿 放置 塑料 包装 固定 固体 支持 Whatman 3mm 纸板 进行 放射 15 )

注意 ”使 容易 量化 显影 胶片 信号 强度 首先 确保 观察 信号 胶片 线性 范围 容易 通过 变换 曝光 曝光 胶片

放射 显影 结合 DNA 杂交 RNA Ret Ve PH, AA 0. 4mol/L NaOH 42C 30min, 1XSSC、0.5% SDS 65°C YEE 60min。 方法 杂交 RNA, 使 受到 影响

WD 合适 样品 直接 闪烁 计数 确定 观察 放射 显影 信和

17.4 实验 : BCHEER ( 方法 ) 传统 逃逸 实验 操作 麻烦 简化 (Celano &, 1989b), 提供 简化 修订 方法 RNA 转录 -苯酚 -

(Chomczynski Sacchi, 1987; 5 ) 纯化 技术 主要 优点 标记 。220

17 RNA 分析

RNA 立即 迅速 纯化 使 TCA 沉降 整个 操作 保证 始终 手套 RNase 技术 规范

@) 方法 方法 〈deBustros ,1986; Celano ,1989a)

@ 细胞 5X107) 160ml 缓冲 〈40%% ;,50mmol/L Tris, pH 8.3; 5mmol/L MgCl ; 0. 1mmol/L EDTA) 收集 2. 2ml 微量 离心 然后 乙醇 -干冰 冷冻 细胞 80 储存 保存 1 管子 储存 .于 方案 细胞 储存 细胞 安庆 保存 1

@ 融化 细胞 200pl 细胞 25 10 Xx 2 (40mmol/L ATP, GTP, CTP; 5mmol/L DTT; 50mmol/L MgCl,; 800mmol/L KCl) 20pl [o-32P] UTP (200pCi; 3000Ci/mmol), 26°C 8 FF 15min,

裂解 细胞 12wl 20mmol/L CaCl, 121 10mg/ml 7 RNase AY DNase [ 消化 DNA。26 孵育 5min。

© 30pl 10XSET (5% SDS; 50mmol/L EDTA; 10mmol/L Tris, pH 7.4) 71 10 mg/ml 载体 RNA 廉价 酵母 RNA)。 3p] 10mg/ml 蛋白 K 进行 ff. 37°C BF im 30min,

© 安装 1ml 结核 25 针头 心地 重复 吸取 裂解 基因 DNA。

© 标记 RNA ), 样品 #2 RNA,

500u1 GTC (4mol/L FMRI; 25mmol/L FF RRA. pH 7.0; 0.5% N- BBA; 0. lmol/L 2-7, 3EZ MB)

80ul 乙酸 (2mol/L, pH 4. 8)

800p1 7k tf AIA

160pl 氯仿 : HRB 〈49 1)

孵育 样品 15min。

注意 RNA 商品 试剂 TRI 试剂 ) 替代 产品 直接 分离 RNA。

12000Xg 微量 离心 10min, 4 离心

© 转移 微量 离心 界面 沉淀 沉淀 RNA。 样品 80C 1h 20C

@ 12000X g 微量 离心 10min, 收集 沉淀 RNA。 4 离心

注意 ”推荐 300 AMIR MBO) 重新 溶解 RNA 1. 7ml 微量 离心 300pl 收集 沉淀

@ 70% DEPC 稀释 95%% 乙醇 ) 洗涤 沉淀 2 3 短暂 95%% 乙醇 洗涤 过程。 RNA 完全 干燥 RNA 沉淀 溶解 250 ~ 500u1 10mmol/L Tris (pH 7.2), Immol/L EDTA, 0.1% SDS 溶液

@ 2yl 计数 检测 RNA 放射 活性 5X107 细胞 预期 活性 1X107cpm。

+ 221 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

® 方法 方法 (deBustros #, 1986; Celano ,1989a), 标记 _RNA 588 DNA 序列 进行 杂交

17.5 实验 方案 : CREEP fo KH tH RE

实验 原理 细胞 标记 转录 明显 (CH) - 尿 脉冲 标记 细胞 5min (Nevins Darnell, 1978). PERE 转录 效率 获得 意义 标记 显然 适用 拷贝 基因 相对 转录 效率 进行 转录 基因 核酸 保护 细胞 RNA 脉冲 标记 克服 问题 制备 产生 意义 标记 细胞 存在 困难 (Greene Pearson,1994)

技术 涉及 脉冲 标记 培养 细胞 10min, RNA, 没有 标记 ) 基因 特异 序列 溶液 杂交 S1 RRB. Axe. eA cDNA 产生 比赛 信和 显要 数据 降解 杂交 转录 比率 Cerenkov 计数 检测 方法 方案 获得 资料 具有 优点 转录 标记 维持 标记 保持 记过 细胞 杂交 RNA。 快速 定量 方法 需要 X 射线 胶片 使 闪烁 计数 方法 显影 缺陷 曝光 线性 )。 方法 检测 转录 活性 微妙 变化 些微 变化 传统 实验 检测

直接 生长 介质 培养 方法 25xCiyml[L3H]- 尿 《〈 活性 27.1Ci/mmol), 培养 细胞

注意 包括 107 细胞 RNA (ERO).

当心 ”在 标记 阶段 结束 根据 指导 放射 培养 RNA

@ 收集 细胞 冰冷 PBS 洗涤 细胞 沉淀 4C

@ 1.8ml NP-40 裂解 缓冲 (10mmol/L Tris, pH7.4; 10mmol/L NaCl; 3mmol/L MgCl; 0.5%NP-40) 细胞 107), HEM HSE SK PAY 2. 2ml 微量 离心 孵育 3min。

@ 4°C 4000 X g 离心 Smin 收集 细胞

@) 心地 除去 800nl SDS (0.5% SDS; Immol/L CaCl,,; 5mmol/L MgClz; 20mmol/L HEPES, pH7. 5) 细胞

© MA 50U AF RNA DNase I , 37°CREF 15min,

© 细胞 2 微量 离心 然后 心地 体积 : 氯仿 : (25 : 24: 1) 提取

离心 心地 离心

0.1 3molL 乙酸 (pH5.2) 2.5 体积 95% RNA, 20°C 保存

OD 心地 70%% 稀释 95% ) 洗涤 样品 离心 样品 使 完全 干燥

- 222.

17 RNA

@@ 125nl Sl 杂交 缓冲 (40% HB FH BH; 40mmol/L PIPES,PpH6. 4; 400mmol/L NaCl; lmmol/L EDTA, pH8.0) RNA 沉淀 确保 RNA 重新 溶解 重要 又。 剧烈 振荡

注意 1 RNA 溶解 足够 杂交 缓冲 使 杂交 反应 达到 20nl。

注意 2 样品 忘记 反应 : 没有 没有 Sl KRM ,@ 250U SI 核酸 @ 没有 Sl 核酸

® RNA 样品 50C 2min,

® 样品 变性 标记 ) 25ng/pl 0. Sug /20pl 杂交 反应

注意 ”一定 线性 变性 DNA。 煮沸 10min 使 变性 使 RNA- 65 ,10min, 保证 杂交 反应 变性

@ 实验 确定 温度 杂交 14 关于 优化 建议 温度 37C

© 杂交 阶段 结束 样品 :

160w1 2 Sl 核酸 缓冲 (0.5mol/L NaCl; 0. 1mol/L 乙酸 ,pH5. 5; 9mmol/L ZnSO, )

142p1 7k

6ul Awe Ay HER DNA (10mg/ml; [最 ]js*0. 02ng/ml)

12yl S1 核酸 (25U/pl; [HRRIL1U/pd

32°C HR F 1h.

注意 “一定 准备 任何 S1 核酸 提供 系统 计数

© 样品 80pl 终止 缓冲 (3mol/L GMA, pHs. 2; 20mmol/L. EDTA, pH8.0; 40ug/ml 载体 RNA)。

OQ 1. 0ml 冰冷 95%% 颠倒 彻底 混合 孵育 20min.

(8 Millipore Sampling Manifold (4 Wf th #* A HB 2 wt we; Millipore, Billerica, MA) #4 GF/F 玻璃 纤维 收集 沉淀

500pl 70%% 滤纸

@ 转移 闪烁 合适 体积 闪烁 样品 进行 计数 5min, 3 保留 活性 直接 RNA 杂交 程度 比例 合成 速率 比例

17.6 RNA ¥ 2], RNA ¥ Sl fe RNA ¥ SB i242HED

实验 同时 评价 基因 序列 相对 转录 活性 细胞 RNA 聚合 共同 作用 结果 毒性 蘑菇 (Amanita phalloides) 真菌 〈c- ) 活性 毒素 结合 RNA RAM. FHA RNA 聚合 毒素 敏感 (Roeder, 1976). Wye BEA 0. Olug/ml RNA 聚合 活性 降低 50% (Roeder, 1976), RNA AAS MM tL Xt oH A Be BRAY HD HIE

HE ABER, {EL BES Bi) Fe] E50 % AA i TR VE i BE 25pg/ml 浓度 ,RNA 聚合 Xt a HB « 223

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

敏感 - 毒性 必须 测定 聚合 RNA 合成 工具 标记 反应 w- 重要 阴性 印迹 杂交 假象 斑点 印迹 进行 定量 杂交 阴性

培养 细胞 细胞 ,RNA 聚合 I 、RNA RAMI. RNA RQ Ae MM At 观察 RNA Saw aA. HAW 50%~70%, 20%~40%MA 10%. WHERE ASHRAM a. CEMA MRA, co BAR RU RMR RAMA, 37 RNA 聚合 贡献 进行 清楚 测定

@ 标记 反应 a FS DK

@ 标记 反应 lwg/ml a KH i.

@ 标记 反应 100wg/ml o- KS HK

细胞 反应 混合 短暂 孵育, 然后 进行 标记 反应 温度

反应 转录 产物 代表 RNA 聚合 活性 @ 代表 RNA 聚合 活性 活性 RNA 聚合 活性 ao 毒性 引起 差异 斑点 印迹 9 )、 变性 琼脂 转录 10% 丙烯 酰胺 ; 通过 使 显影 转录 产物

,, 蔗糖 密度 梯度 离心 测定 转录 〈Marzlufft Huang, 1984) 方法 简单 费时 专门 设备

OO RNA 溶解 Immol/L EDTA, pH7.5 #) 0.1% SDS ; 0.5ml 溶液 17ml 10% ~40% (100 400g/L) FE RRR EE, i RE RE BE EE OO. 1molL NaCl, Immol/L EDTA, 0.1%SDS 10mmol/L Tris 配制 ,pH7. 5。 梯度 必须 离心

@ 合适 转子 90000Xg 转速 离心 16h。 限定 参数 检测 4S 45S RNA,28S RNA 沉降 梯度 60% Ab.

@ 然后 254nm 紫外 吸收 梯度 ISCO. UA-6 pg ) 10nl 检测 TCA 沉淀 计数 测定 放射 活性

17.7 提取 RNA

实验 标记 NTP 存在 延伸 合成 核糖 测定 基因 转录 速率 Northern RNA 理解 初级 转录 非常 重要 试验 杂交 信和 强度 定量 数据 方法 检测 杂交 信号 评价 标记 转录 反应 混合 通过 放射 显影 电泳 研究

DNA 消化 Southern 印迹 标记 RNA 群体 杂交 技术 重要 缺陷 缺少 RNA 自身 信息 电泳 DNA 片段 RNA 片段 极端 情况 hnRNA 降解 导致 产生 DNA 非特 异性 杂交 降解 hnRNA DNA 正常 杂交 洗涤 结合 RNase 消化 非特 异性 RNA 降低 现象 导致 背景

* 224 -

17 RNA

基因 表达 研究 ,RNA 代谢 周转 重要 指标 试图 转录 阐明 RNA Northern 研究 必需 RNA Northern 信号 强度 获得 定量 数据 提供 单独 斑点 印迹 定性 模式 强烈 RNA 转录 存在 实验 显影 系列 编码 相关 ) 序列 伴随 编码 ) 序列

Northern 杂交 RNA 细胞 样品 制备 细胞 RNA 提取 方法 缩短 细胞 破碎 RNA 使 基于 技术 抑制 细胞 RNase YR HE (Chirgwin ,1979; Chomczynski Sacchi,1987) 细胞 细胞 选用 完整 细胞 RNA 方法 细胞 纯化 RNA。 RNA 过程 必须 控制 核酸 溶剂 满意 结果 RNA 实验 方案 推荐 情况 样品 剧烈 振荡 基因 物质

17.8 $3844: 直接 RNA

方法 改进 Soeiro Darnell (1969) 提取 RNA 保持

@ 冰冻 细胞 ,4C、750Xg 离心 3min。 细胞 AB, MET FRO.

@ 1lml 冰冷 改进 RSB/K 缓冲 (10mmolL Tris, pH7.9; 10mmol/L NaCl; 10mmol/L MgClz; 100mmol/L KCl) 洗涤 细胞 RNase 乙烯

注意 如果 比例 缩小 提取 体积 2. 2ml 微量 离心 RNA。 使 核酸 保持 浓缩 状态 体积 进行 操作

@ AMAR (HSB) (10mmol/L Tris, pH 7.4; 500mmol/L NaCl; 50mmol/L MgClz; 2mmol/L CaCl.) 细胞 1~5) x10" 细胞 /ml, RNase DNase 浓度 50 U/ml,

EH HSB 提前 配制 RNase DNase | HATE ARIA MA.

® 室温 混合 30s。 裂解 均一 必需

注意 ”用 DNase 短暂 目的 断裂 完全 降解 基因 DNA。 降低 使 操作 容易 方法 选择 DNA,

© 体积 SDS 提取 缓冲 (10mmol/L Tris, pH7.4; 20mmol/L EDTA; 1% SDS).

© 体积 NETS 缓冲 (10mmol/L Tris, pH7.4; 100mmol/L NaCl; 10mmol/L EDTA; 0.2% SDS) 饱和

注意 注意 事项 参见 附录 3。

@ 体积 氯仿 氯仿 : SE 〈49 : 1) 混合 心地 彻底 混合

INFAZ 55°C, 10min, fA KE.

@ vk ER UK AKA H Smin, 2500Xg 离心 3min

« 225 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

GD 心地 沿 滑动 硅烷 微量 离心 ) 通过 底层 使 保留 步骤 @ 步骤

注意 RNA 吸附 损失 RNA, 方法 尤其 重要

注意 2 ”关于 玻璃 附录 8。

@ 2500X g 离心 3min

心地 回收 干扰 )。 体积 氯仿 心地 彻底 混合 离心

® 转移 2. 5 ARRAN 95% CBB FT 20°C HR RNA.

4C 收集 沉淀 70%% 稀释 INCE) 洗涤 8 测定 进行 质量 控制 检测

17.9 GRAF: 核糖 核酸 细胞 制备 NA

方法 改进 Chomczynski Sacchi (1987) 基于 RNA TRI 试剂 TRIzol 方法 自己 制备 试剂 放心 实验 方案 取代 产品

D 细胞 提前 制备 细胞 冷冻 储存 细胞 解冻 3~5min,

@ MA GTC 溶液 D (mol/L HAMM; 25mmol/L 柠檬 ,pH7.0; 0.5% N-+— Ge Fe VLA RA; 100mmol/L 2-H EZ BE) 裂解 完整 细胞 2X106 细胞 使 100pl 溶液

注意 方法 步骤 体积 假设 溶液 D 体积 Iml。 比例 放大 提取 液体 适当 增加 溶剂 体积 溶液 D 800wl, 提取 2. 2ml 离心 进行

G@) 乙烯 〈15ml 效果 ) 顺序

0. lml 2mol/L 乙酸 ,pPH5. 2

1. Oml 饱和 )

0. 2ml 氯仿 + FRR 〈49 : 1)

试剂 心地 颠倒 混合 试剂

F 10s.

® 使 样品 冷却 15min, 4 离心

TERR Corning 乙烯 承受 重力 速度 6000Xg。 使 检查 制造 离心

@ RAK COA RNA) 转移 0. 75 体积 lml) SARIS. —20°H# 1h 沉淀 RNA,

注意 沉淀 RNA 管子 承受 10000Xg 离心 微量 离心 洗涤 Corex 玻璃 合适 橡皮

© 4C、10000Xg 离心 20min 收集 沉淀 心地

注意 关于 步骤 离心 选择 参见 步骤 。226 -

17 RNA 分析

@ ¥ RNA 沉淀 溶解 200n1 溶液 D〈 步骤 @) 转移 RNA fH 1. 5ml 微量 离心

0.75 体积 冰冷 20C 放置 1h 重新 沉淀 RNA.

© 微量 离心 4C 离心 10min 收集 沉淀 心地

@ 70%% 离心 95 乙醇 洗涤 沉淀 空气 干燥 使 样品 完全 干燥

潮湿 RNA 沉淀 重新 50pl TE 缓冲 (pH7.5) 50pl 。65'C MF 10min 溶解 浓度 8 ); RNA 存储 80C,

17.10 &2 #4 & #&

Benecke, B. J., Ben-Ze’ev, A., and Penman, S. (1978). The control of mRNA production, translation, and turnover in suspended and reattached anchorage-dependent fibro- blasts. Cell 14, 931.

Ben-Ze’ev, A., Farmer, S. R., and Penman, S. (1980). Protein synthesis requires cell-surface contact while nuclear events respond to cell shape in anchorage-dependent fibroblasts. Cell 21, 36S.

Celano, P., Baylin, S. B., and Casero, R. A. (1989a). Polyamines differentially modulate the transcription of growth-associated genes in human colon carcinoma cells. J. Biol. Chem. 264, 8922.

Celano, P., Berchtold, C., and Casero, R. A. (1989b). A simplification of the nuclear runoff assay. Bio Techniques 7, 942.

Chirgwin, J. M., Przybyla, A. E., MacDonald, R. J., and Rutter, W. J. (1979). Isolation of biologically active ribonucleic acid from sources enriched in ribonuclease. Biochemistry 18, 5294.

Chomezynski, P., and Sacchi, N. (1987). Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal. Biochem. 162, 156.

deBustros, A., Baylin, S. B., Levin, M. A., and Nelkin, B. D. (1986). Cyclic AMP and phor- bol esters separately induced growth inhibition, calcitonin secretion, and calcitonin gene transcription in cultured human medullary thyroid carcinoma. J. Biol. Chem. 261, 8036.

Derman, E., Krauter, K., Walling, L., Weinberger, C., Ray, M., and Darnell, J. E. (1981). Transcriptional control in the production of liver-specific mRNAs. Ce// 23, 731.

Ernest, M. J., Schultz, G., and Feigelsen, P. (1976). RNA synthesis in isolated hen oviduct nuclei. Biochemistry 15, 824.

Farrell, R. E., Jr., and Greene, J. J. (1992). Regulation of c-myc and c-Ha-ras oncogene expression by cell shape. J. Cell. Physiol. 153, 429.

Greenberg, M. E. (1988). Identification of newly transcribed RNA. Jn “Current Protocols in Molecular Biology” (F. M. Ausubel, R. Brent, R. E. Kingston, D. D. Moore, J. G. Seidman, J. A. Smith, and K. Struhl, Eds.), p. 4.10.1. John Wiley & Sons, New York.

Greene, J. J., and Pearson, S. L. (1994). Measurement of gene-specific transcription by

nuclease protection of pulse-labeled nuclear RNA. J. Biochem. Biophys. Methods 29, 179.

Groudine, M., Peretz, M., and Weintraub, H. (1981). Transcriptional regulation of hemo- globin switching on chicken embryos. Mol. Cell. Biol. 1, 281.

° 227 +

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Gurney, T., and Foster, D. N. (1977). Nonaqueous isolation of nuclei from cultured cells. Methods Cell Biol. 16, 45.

Jelinek, W., Molloy, G., Fernandez-Munoz, R.., Salditt, M., and Darnell, J. E. (1974). Secondary Structure in heterogenous nuclear RNA: Involvement of regions from repeated DNA sites. Mol. Biol. 82, 361.

Kanazawa, A., O’Dell, M., Hellens, R. P., Hitchin, E., and Metzlaff, M. (2000). Mini-scale method for nuclear run-on transcription in plants. Plant Mol. Biol. Reporter 18, 377.

Kramer, A., Frick, M., and Keller, W. (1987). Separation of multiple components of HeLa cell nuclear extracts required for pre-messenger RNA splicing. J. Biol. Chem. 262, 17630.

Lund, E., and Paine, P. L. (1990). Nonaqueous isolation of transcriptionally active nuclei from Xenopus oocytes. Methods Enzymol. 181, 36.

Manley, J. L. (1984). Transcription of eukaryotic genes in a whole-cell extract. In “Transcription and Translation: A Practical Approach.” (B. D. Hames and S. J. Higgins, Eds.), p. 71. IRL Press, Oxford, England.

Marzluff, W. F. (1978). Transcription of RNA in isolated nuclei. Methods Cell Biol. 19, 317.

Marzluff, W. F., and Huang, R. C. C. (1975). Chromatin directed transcription of 5S and tRNA genes. Proc. Natl. Acad. Sci. 72, 1082.

Marzluff, W. F., and Huang, R. C. C. (1984). Transcription of RNA in isolated nuclei. In “Transcription and Translation: A Practical Approach” (B. D. Hames and S. J. Higgins, Eds.), p. 89. IRL Press, Oxford, England.

Marzluff, W. F., Murphy, E. C., and Huang, R. C. C. (1973). Transcription of ribonucleic acid in isolated mouse myeloma nuclei. Biochemistry 12, 3440.

Marzluff, W. F., Murphy, E. C., and Huang, R. C. C. (1974). Transcription of the genes for 5S ribosomal RNA and transfer RNA in isolated mouse myeloma cell nuclei. Biochemistry 13, 3689.

Nevins, J. R. (1987). Isolation and analysis of nuclear RNA. Methods Enzymol. 152, 234.

Nevins, J. R., and Darnell, J. E. (1978). Steps in the processing of Ad2 mRNA: Poly(A)* nuclear sequences are conserved and poly(A)* addition precedes splicing. Cell 15, 1477.

Price, R., and Penman, S. (1972). A distinct RNA polymerase activity, synthesizing 5.5S, 5S, and 4S RNA in nuclei from adenovirus 2-infected HeLa cells. J. Mol. Biol. 70, 435.

Roeder, R. G. (1976). Nuclear RNA polymerase. Jn “RNA Polymerase” (R. Losick and M. Chamberlain, Eds.), pp. 283-329. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.

Soeiro, R., and Darnell, J. E. (1969). Competition hybridization by “pre-saturation” of HeLa cell DNA. J. Mol. Biol. 44, 551.

Wittelsberger, S. C., Kleene, K., and Penman, S. (1981). Progressive loss of shape-respon- sive metabolic controls in cells with increasingly transformed phenotype. Cell 24, 85.

(FFE; RRR)

+ 228 -

=188 cDNA sft

18.1 基本 原理

RNA 细胞 易于 裂解 生物 细胞 方法 提纯 RNA 首要 又。 如果 操作 足够 提取 RNA 满足 研究 基因 转录 实验 因此 基因 表达 研究 需要 RNA

Northern 杂交 保护 实验 mRNA 逃逸 实验 ) 互补 RNA DNA RNA 必须 强调 检测 方法 存在 灵敏 问题 主要 RNA 自身 特性 导致 : 稳定 ; 单个 RNA 直接 增强 信号 方便 ,RNA 通常 转录 互补 DNACcDNA)。 DNA 技术 目前 倍数 基因 cDNA。 主要 便利 cDNA 模板 RNA 稳定 运用 系列 技术 规模 基因 进行 短期 CDNA 细胞 基因 转录 活跃 产物 CAI RNA ) 保存

18.2 cDNA Sree

cDNA 合成 基本 核心 具有 挑战 合成 技术 合成 结构 序列 ,cDNA 基因 形式 cDNA 方法 PCR RA ABER). (ARE BE EDNA 合成 正确 理解 生物 技术 帮助 当代 生物 基础 CDNA 合成 技术 回顾

cDNA RNA 模板 催化 作用 体外 合成 产物 开始 质量 RNA 合成 EDNA 必要 常规 RNA RNA, 技术 需要 RNA 选择 含有 poly(A) ”的 RNA 作为 合成 cDNA 模板 ; 现在 实验 比较 常见 直接 RNA 细胞 RNA 作为 模板 纯化 含有 poly(CA) AY RNA. Ha PCR 技术 运用 poly(A) “RNA 作为 模板 合成 CDNA 没有 必要 值得 推荐 操作 损失 转录 特殊 实验

229

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

poly(A)+ RNA 作为 模板 合成 EDNA

研究 cDNA 研究 基因 表达 结构 核酸 表达 体内 纯化 蛋白 方面 存在 优势 ,RNA 稳定 转化 稳定 cDNA 信息 保存 开发 载体 克隆 目的 cDNA 使 克隆 操作 样品 回收 cDNA, 使 连接 进入 合适 载体 转化 细菌 连接 病毒 载体 序列 便 cDNA 文库 。cDNA 文库 细胞 样品 基因 表达 情况 记录 档案 cDNA 通过 杂交 方法 筛选 比较 复杂 基因 DNA 确定 5" 3' 编码 ,cDNA 文库 保存 基因 表达 情况 那些 存在 转录 活性 产生 mRNA 转录 基因 AA cDNA 合成 cDNA 文库 基因 克隆 DNA 序列 任何 关于 基因 表达 转录 状态 信息

cDNA 直接 RNA 作为 模板 DNA 直接 反映 细胞 RNA 状况 生物 体内 相同 遗传 物质 同一 动物 基因 DNA 进行 几乎 相同 数据 结果 基因 表达 相互 作用 差异 细胞 生理 特性 明显 维持 自身 生存 基因 表达 同类 细胞 cDNA 文库 相同 生物 特定 样品 cDNA 文库 独一无二 细胞 RNA 实验 环境 变化 细胞 周期 变化 生变 特定 样品 同时 构建 cDNA RAAT AH. 特定 生物 细胞 构建 CDNA 文库 基因 DNA 基本 没有 什么 变化

cDNA 合成 进行 提出 质量 RNA 合成 EDNA 18.1 & 合成 EDNA 涉及 目前 合成 CDNA 常用 cDNA 合成 反应 敏感 使 试剂 因为 摸索 浪费 AMAR, BRATS RAR RNR E, SX Be ONS 易于 操作 反应 试剂 cDNA 试剂 反应 体系 cDNA。 sr eke a lie, Pt St he 研究 提供 备用 实验 方案

18.1 合成 cDNA 常用

cDNA 合成 作用

5 3“ (依赖 RNA DNA sabia RNA 转变 cDNA 聚合 ) RNase 活性 (小 ) 包括 mRNA, hnRNA, tRNA, rRNA 病毒 RNA 5'->3! 活性 cDNA 合成 (5 3 核酸 DNA 聚合 I (Kornberg ) 5 3 核酸 活性 活性 缺口 mRNA; Gubler Hoffman,1983) DNA 聚合 [ (Klenow 片段 ) SA DNA 合成 经典 cDNA win Se aes Ree | ) RNase H _ YI) RNA = DNA 合体 mRNA | ”切割 活性 CDNA 合成 提供 + 230 -

18 cDNA 合成

© oe A cDNA 合成 作用 Si 核酸 特异 核酸 (CDNA RNA) 合成 ( 特异 针对 结构 ) T4 DNA 连接 连接 mee” GE ee 5'~3' 活性 dscDNA 末端 ;其 活性 T4 DNA 聚合 3' 5/' 活性 DNA 3% 4 Bi I A 200 ff cDNA 限制 ;保护 CDNA DNA (EcoRI ) | REACT TE EcoRI

依赖 Coz+ ,在 末端 ; #i Mn2+ ,在 3-OH Ein TER 活性 合成 (Mn2+ 依赖 ); 5'~>3' 活性 合成 PCR (Mg2+ 依赖 ) gece Se 活性 转录 活性 (第 合成 ) ;第

5'>3/ RA MPR HE 合成 PCR

O 方法 合成 cDNA 管子 完成 RT-PCR 19 讨论

末端 脱氧 转移 5 3 聚合 活性

聚合 (Tih polymerase)

18.2.1 ”第 合成 注意 事项

体内 体外 合成 核酸 必需 模板 根据 Chargaff’s 规则 ( 1 ) 指导 互补 合成 cDNA mRNA。 提供 3!- OH 引物 。3 -OH 使 单个 连接 支持 DNA 聚合 RNA 聚合 非常 重要 延伸 方向 5 -~3', 形成 必须 平行 方式 模板 配对 合成 cD- NA, 必须 mRNA 3 末端 互补

cDNA 合成 RNA poly (A)+ RNA 模板 5 7 ) 变性 RNA 结构 poly(T)9 引物 oligo (dT), 退 结合 RNA 3 poly(A) 尾巴 引物 RNA 模板 引物 提供 3 端的 OH, 互补 RNA 模板 CDNA) 沿 5 3 方向 合成 18. 1).

54

¥fi TE oligo(dT) 18. 1

oligo(dT) 引物 5 末端 附加 悬挂 序列 序列 含有 ) 定向 克隆 @ 序列 序列 接头 18. 2)

@ FRA TR. @ 定向 克隆 DNA 方向 载体 克隆 灵活 使 研究 DNA 表达 蛋白 (CDNA-~RNA~~ 白质 ) 定向 克隆 <

23 和。

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

' 5! _—— as

O 接头 oligo(dT) 18. 2

任何 引物 合成 方法 需要 模板 引物 支持 cDNA MAK. ££ oligo(dT) 方面 主要 改进 创新 使 摩尔 混合 oligo(dT) 51%, Hitisty T,.V, HP V= A, C, G. Au. $3] wD EB 5! TTTTTTTTITITA, 5’ TTTTTTITITTIC A S'TTTTTTTTTTTIG. 319 〈V)3/ 端的 使 引物 poly(A) 5 末端 方式 启动 结果 使 代表 cDNA 合成 cDNA 包含 模板 mRNA 编码 工作 非常 惊人

认识 极其 重要 引物 设计 cDNA 2X poly(A)? BY cD- NA, cDNA。 mRNA 酸化 8。 解决 问题 引发 cDNA 合成 模板 模板 3 末端 引发 (图 18. 3)

TREETTTTTTRREE 3" HO HO HO 随机 引物 18. 3

poly(A) 200~250 引物 排除 cDNA ARM poly(A) 3 情况 ,cDNA 5' 相当 明显 5 结构 明显 mRNA, 引物 非常 工作 。, 之, {MH oligo(dT) 引物 合成 cDNA 随机 引物 合成 cDNA, 具有

笔者 实验 oligo(dT) 引物 随机 引物 混合 同一 反应 CDNA 合成 消除 poly(A)~ 转录 排除 担心 片段 接近 cDNA。 合成 参数 需要 改变 差异 同时 使 推荐 引物 研究 标准 操作 程序

@ 采用 方法 合成 EDNA, mRNA 3' 配对 方式 构建 CDNA 包含 poly CA) ~ mRNA。 必须 意识 循环 周期 80C 清理 重新 情况 合成 CDNA 合成 方法 知识 影响 实验 结果 解释 .考虑 oligo CdT) 引物 构建 EDNA 缺点 构建 使 随机 引物 合成 CDNA, 笔者 实验 EDNA 同一 反应 随机 引物 oligo(dT)

¢ 232

|

18 cDNA 合成

特别 价值 (Bassett 4, 2000; Bassett ,2004) 使 RNA, 使 oligoCdT), 任何 mRNA cDNA。 笔者 观点 oligo(dT) 随机 引物 非常 满意 结果 cDNA 进行 PCR 任何 引物 设计 正确 RNA 引物 问题

合成 EDNA 命名 “依赖 RNA DNA 聚合 ”, “RT”。 复杂 事情 预先 使

AMV, 3€ 8 28 bit ae FH LI Hs

MMLV, 白血病 病毒

改造 RNase fi.

rTth, HAMAR! (Mn2+ 依赖 )

AMV MMLV。 研究 喜欢 AMV, 反应 50 温度 活性 适宜 模板 AMYV 制剂 RNase H 活性 降解 DNA 引物 RNA 模板 退火 形成 RNA : DNA RNA A, ARG MRM. HMA DNA 引物 结合 稳定 使 cDNA 合成 减少 MMLYV RNase 活性 适宜 片段 37 40C 使 实验 常规 使 AMV (Promega and Roche Applied Science varieties) 非常

实验 转录 仍然 头痛 问题 建议 许可 参考 借鉴

@O 必须 检查 RNA 完整 ,cDNA 合成 反应 使 RNA 完整 需要 精心 制作 电泳 装置 需要 染色 检测 rRNA 存在 弥散 程度 8 )。 提纯 存放 RNA 简单 价值 实验

@ 正如 那样 转录 制剂 污染 背景 RNase 活性 活性 。RNase H 作用 使 DNA : RNA RNA 形成 缺口 cDNA 合成 反应 ,DNA 引物 RNA 模板 退火 形成 RNase H 攻击 目标 引物 完整 mRNA 结合 结果 引物 延伸 转录 开始 J, RNase HGHEDAPREK cDNA 合成 生长 因为 受到 负面 影响 保证 使 RNase -的 明智 引入 突变 完全 除去 RNase H 活性 催化 结构 完全 消除 J RNase 活性 例子 ,Promega 公司 突变 缺失 修饰 MMLYV Superscript [| (Invitrogen) BD PowerScript (BD Biosciences) 销售 产品

@ 考虑 合成 反应 混合 明胶 CDNA 合成 试剂 作用 稳定 改进 反应 效率 使 明胶 10kg/ml。

增强 50C 进行 非凡 进行 cDNA 合成。 高温 提高 cDNA 合成 非常

@ RF Taq 聚合 Mn 依赖 活性 rTth ,rTth 欢迎 233

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

RNA 结构 清楚 RNA 结构 缩短 CDNA 产物 fe FA. © cDNA 反应 CRT-PCR, 19 ), 考虑 反应 缓冲 稳定 rTth 依赖 Mn2+ 活性 创新 缓冲 系统 使 CDNA 合成 PCR 整个 需要 准备 反应 cDNA Ah, 进行 需要 打开 试管 。rT 聚合 选择 取决 支持 合成 引物 [基因 特异 引物 oligo(dI) 随机 引物 ]】 必须 保持 序列 〈Mn 副作用 )。 © RNasin (RNase 抑制 4 讨论 ) 保存 甘油 储存 缓冲 试剂 20C 稳定 cDNA 合成 反应 研究 cDNA 混合 工作 非常 相当 同时 PCR 准备 PCR 工作 混合 PCR 必需 ) 混合 体积 SRG FLAY HO, 避免 操作 注射 导入 程序 误差 | tt FEAR AEE ee ROR DL, A A EC PRES pH. GPS. OPP). BE wha HEAT RAB RE 10 x SS ae Be Oh a a SX Fi ae Be (如 MMLV a AMV) 稀释 1X 温度 然后 研究 必须 引物 、RNase 抑制 转录 RNA; 同时 物质 dATP, dCTP, dGTP, dTTP (以 dNTP 表示 ) 合成 CDNA 反应 10min 1h。 cDNA 合成 PCR . 典型 AMY 催化 cDNA 合成 反应 : 10mmol/L Tris, pH 8.3; 50mmol/L KCl; 5mmol/L MgClz; lmmolL dNTP; 3. Ong 引物 Loligo(dT) 5 BAPL A 混合 ],20U RNasin; 20U AMV ie # A; 50~1000ng RNA; 体积 20pl。 便 合成 缓冲 购买 附加 减少 优化 反应 CDNA 合成 例子 使 mRNA 变性 影响 RNasin 活性 RNA 操作 整个 使 核酸 技术 et fa @ 准备 混合 反应 1

反应 @ 反应 @@

dNTP( 10mmol/L) Lyl 随机 引物 (2. Ope/pld @ % Sul KARIM 1 反应

@ til 2n1 RNA® (50~1000ng; 保证 管内 相同 )。

oligo(dT)1iz~18(1.0pg/ AD) 共计 ul

@ 笔者 实验 规模 实验 1 2ml DNARA LEM RNasin ), 20C @ 反应 配置 混合 反应 ,注意 反应 体积 需要 反应 数目 1 计算 标准 程序 ,为 保证 足够 混合 反应 微量 注射 情况 程序 适用 合成 PCR 反应 混合 反应 ( 19 HE). @ RNA 直接 混合 反应 混合 反应 单个 RNA 样品 + 234 -

|

18 cDNA 合成

® MF 70°C MFA Smin, MK ERA 2min。 步骤 目的 RNA 变性 @ 准备 混合 反应 2。

汪汪 反应 a 反应 适量 AMV (20U/Pl) Lyl 10X 缓冲 2pl 共计 10pl

RNasin(20p/pl) Iyl

© 10nl 混合 反应 2 变性 RNA

@ 25C 5min。

注意 ,@D 引物 模板 退火 ; @ 使 步骤 稳定 使 随机 引物 /或 oligo(dT) 延伸 反应 顺利 通常 cDNA 产物

@ 37 42C 60min, 增强 50C 50min。

注意 ”很 合成 EDNA。 供应 选择

© 样品 99C 5min 转录 进行 PCR 操作

@ 现在 合成 cDNA 实验 RT-PCR 直接 参考 19 合成 cDNA, 参考 cDNA 合成 标准 实验 方案

18.2.2 注意 事项

克隆 cDNA 进展 属于 支持 cDNA 合成 策略 ,cDNA 合成 原理 早期 技术 使 方法 近乎 相同 技术 方法 合成 mRNA 模板 3 末端 暂时 形成 作为 引物 cDNA 作为 模板 cDNA 合成 连接 S1 核酸 消化 16 ) 使 进行 随后 载体 插入 〈Efstratiadis 1976) 标准 原始 方法 导致 mRNA 5 丧失 使 EDNA 暴露 S1 核酸 降解 活性 Sl 核酸 攻击 控制

随后 ,Okayama Berg(1982) 方法 oligoCdT) 载体 oligoCdT)iz~is, 合成 RNA : DNA 连接 接头 〈linker) 技术 真正 创新 使 RNase DNA 聚合 混合 cDNA 合成 mRNA 模板 支持 cDNA 合成 途径 RNase 使 RNA 利用 DNA 聚合 5 3 活性 降解 mRNA。 同时 ,DNA 聚合 (Klenow 片段 Kornberg 蛋白 片段 DNA pol I) 5 >3' 聚合 活性 使 RNA 3 -OH cDNA。 DNA 聚合 黏合 RNase H 产生 缺口 T4 DNA 连接 修复 cDNA 骨架 增加 核酸 克隆 步骤 稳定 18.4)。 方面 主要 进展 Gubler Hoffman(1983) 方法 方法 使 oligo(dT)i is CDNA WF Okayama Berg RNase H、DNA 聚合 I DNA 连接 鸡尾酒 合成 cDNA,

Gubler Hoffman 阐述 方法 cDNA 合成 标准 方法 末端

“235

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

DNA GMB

[ox], oN 1,

18.4 sae

避免 方法 合成 cDNA 相对 mRNA 模板 方式 cDNA 制备 正确 cDNA 需要 T4 DNA 8 en 连接 载体

cDNA、 cDNA 合成 完成 修饰 产生 适合 克隆 载体 结构 末端 载体 质粒 CDNA 含有 稀有 限制 接头 引发 合成 序列 构建 提高 连接 效率 Sa eee ERE TN Ne ple, 2001; Ohara #, 2002; Invitrogen Gateway Technology)

接头 CDNA 合成 方法 See HEAR 《Ge 连接 产生 eee ee (图 18.5),

cDNA

大人 18.5

ORTEGA Clinker) 接头 (adapters) Hh, EA HA KAKA A H BLE EAE MEME, ate ROR Chomopolymerically tailing) 方法 文献 报道 方法 末端 脱氧 转移 (未 片段 ) dGTP, 使 EDNA 转移 载体 使 dCTP。 退火 互补 形成 互补 poly(dC) poly(dG) 片段 DNA 连接 连接 - aes

- 236

Eee he

18 cDNA 合成

例子 添加 限制 相应 产生 末端 9。 定向 克隆 @, 需要 使 接头 实现

需要 设计 注意 序列 接头 方向 CDNA 合成 克隆 使 提供 连接 接头 /或 接头 方便 连接 选择 载体 使 PCR 引物 必须 策略 相符

18.3 核定 cDNA 合成 效率

定量 检测 效率 作为 同样 标准 依据 考虑 [ce- ?了 ] dCTP [e*H] dCTP 标记 合成 cDNA 通过 cDNA、 cDNA 电泳 直接 放射 显影 同位 cDNA 质量 光一 显示 弥散 接近 非常 麻烦 另外 方法 cDNA Ja, FA SYBR 绿 定量 比较 样品 CDNA 电泳 弥散 进行 取决 实验 爱好 选取 cDNA 反应 产物 0. 1 体积 0. ImolL NaOH 变性 1. 2% 变性 琼脂 电泳

18.4 注意 事项

连接 反应 片段 1:1 获得 连接 插入 片段 接近 1 : 1, 非常 完全 克隆 效率 细菌 选择 培养 ZE (AN 50ng/ml 西林 12. 5ug/ ml 四环素) 使 克隆 含有 目的 片段 插入 便 确实 存在 候选 克隆 重组 载体 检测 克隆 实验 片段 摩尔 1 : 1 鉴定 参数

产生 重组 克隆 问题 计算 达到 程度 反应 末端 Cpmol) 增加 减少 质量 使 载体 插入 片段 末端 比例 达到 1 : 1, 计算 完成 连接 优化 必须 计算 片段 载体 末端 然后 连接 反应 使 它们 达到 平衡

_ pg DNAX2X10° FE BIE IK St F B= WE DNA

“末端 参与 连接 反应 末端 插入 片段 载体 ) ; Ag DNA 载体 插入 片段 质量 ; 660 平均 ; 基数 载体 片段 ;

@ 使 限制 产生 末端 识别 ,cDNA 缩短 排除 问题 策略 连接 接头 连接 限制 消化 使 CDNA Eco RI ) 例子 ,Eco RI EDNA, 使 Eco R EcoRI US. @ WH cDNA 限制 允许 片段 希望 方向 连接 策略 常用 cDNA 表达 情况 ¢ 237 =

RNA 研究 方法

RNA 鉴定 实验 指南

2X106 xg(10-5) pmol(12-") 转换 末端 连接 计算 例如 作为 插入 片段 575ng DNA, 852bp, 2. 045pmol Ai:

0.575wg X 2X 10° 摩尔 ttECE6I

克隆 DNA 作为 插入 片段 同样 需要 计算 载体 末端 使 连接 反应 浓度 相同

单一 插入 片段 计算 简单 直接 克隆 片段 cDNA 混合 非常 复杂 cDNA 非常 均一 cD- NA 值得 策略 改变 插入 片段 载体 比例 系列 Hie AI, Int 0255-14 0.5) 120.75, 121, 1% 1e25s 1? 15,14 AR 反应 结束 连接 产物 转化 E. coli 感受 细胞 2, 常用 转化 方法 制备 理想 感受 直接 公司 购买 (如 Promega).

18.5 424 % #

Bassett, C. L., Nickerson, M. L., Cohen, R. A., and Rajeevan, M. S. (2000). Alternative transcription initiation and novel post-transcriptional processing of a leucine-rich repeat receptor-like kinase gene that responds to short-day photoperiodic floral induc- tion in morning glory (Ipomoea nil). Plant Mol. Biol. 43, 43.

Bassett, C. L., Nickerson, M. L., Farrell, R. E., Jr., and Harrison, M. (2004). Multiple transcripts of a leucine-rich repeat receptor kinase from morning glory originate from different TATA boxes in a tissue-specific manner. Molec. Gen. Genomics 271(6), 752.

Efstratiadis, A., Kafatos, F.C., Maxam, A. M., and Maniatis, T. (1976). Enzymatic in vitro synthesis of globin genes. Cell 7, 279.

Gubler, U., and Hoffman, B. J. (1983). A simple and very efficient method for generating cDNA libraries. Gene 25, 263.

Ohara O., Nagase, T., Mitsui, G., Kohga, H., Kikuno, R., Hiraoka, S., Takahashi, Y., Kitajima, S., Saga, Y., and Koseki, H. (2002). Characterization of size-fractionated cDNA libraries generated by the in vitro recombination-assisted method. DNA Res. 9(2), 47.

Ohara, O., and Temple, G. (2001). Directional cDNA library construction assisted by the in vitro recombination reaction. Nucleic Acids Res. 29, e22.

Okayama, H., and Berg, P. (1982). High efficiency cloning of full-length cDNA. Mol. Cell. Biol. 2, 161.

(HARE; SH KLAR)

@ 质粒 构建 cDNA 比较 流行 mR AR 8 eH EY CDNA. FE JE RH «La 非常 相应 细菌 转化 密度 CDNA 阳性 , Be 灵敏 筛选 通常 进行 实验 (将 插入 片段 载体 )。 推定 阳性 克隆 鉴定 操作 必须 进一步 鉴定 载体 携带 插入 片段 质粒 工作 方便

238 -

Re

19 RERRSHERW

19.1 BARE

Zs], RAMEE RN (PCR) 技术 革命 影响 影响 实验 基本 怎样 实验 转录 聚合 (RT-PCR), 任何 CRT) 催化 核糖 核酸 (RNA) 合成 互补 DNA (cDNA) 序列 标准 聚合 (PCR) PIKE CDNA. HFRS CRT) cDNA 重要 作用 方法 研究 基因 表达 普遍 〈RT-PCR) 方法 核糖 核酸 聚合 (RNA PCR), 似乎 PCR 快速 ,RT-PCR 合成 cDNA 首选 方法

RNA 方法 ,RT-PCR 方法 裂解 存在 转录 必定 通过 PCR 产物 没有 转录 基因 反应 体系 提供 模板 没有 产物 产生 PCR 灵敏 ,RT-PCR 目前 表达 转录 进行 检测 定量 使 方法

19.2 聚合 反应

PCR 技术 广泛 生命 科学 基础 研究 领域 产生 巨大 影响 劳动 密集 方法 (大约 1985 ) 逐渐 退出 历史 舞台 精确 形象 “引物 特定 基因 序列 CDNA 序列 方法 (Saiki ,1985; Mullis ,1986; Mullis Faloona,1987) 微量 模板 。PCR 技术 NA 作为 基因 表达 参数 领域 传染 研究 细胞 转录 活性 显示 巨大 潜力 方法 完全 PCR 技术 避免 缺点

D 正确 进行 引物 序列

@ 模板 配对 引物 3 末端

@ PCR 方法 专利 Roche Molecular Systems, Inc. F. Hoffmann-LaRoche Ltd. 专利 许可 使 PCR。PCR 使 授权 详细 询问 联系 the Director of Licensing,Applied Biosystems, 850 Lincoln Centre Drive, Foster City, CA 94404,

¢ 239 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

@ 参加 反应 模板 ), 必须 纯化 利于 引物 退火 随后 延伸 反应

反应 体系 诸多 优化 直到 明确 产物

© PCR 产物 通常 原来 模板 RT-PCR 纯化 作为 RNA 印迹 《〈Northern 印迹 ) 确定 mRNA 模板 真正 确定 PCR 产物 方法

笔者 认为 屡次 困难 研究 老练 PCR 技术 医治 良药 即使 精通 基本 核酸 储存 方法 实验 方法 专注 PCR 技术 认为 PCR 解决 实验 错误 想法

关于 PCR 原理 讨论 文章 非常 列举 系统 读者 参阅 综述 (Dieffenbach Dveksler, 2003; Innis ,1999; McPherson Hames, 1995; Sellner Turbett, 1998). Jb. 读者 通过 PCR 概述 进行 简要

首先 ,PCR 反应 进行 依赖 体系 引物 什么 引物 ? 文中 DNA 序列 通常 研究 特异 序列 引物 标准

@ 引物 30 常用 引物 20 25

@ 引物

@ 引物 3' 必须 羟基 通过 DNA 聚合 5 特殊 任何 修饰

® 引物 3 端的 必须 模板 完全 配对 5 末端 模板 配对

© 引物 必须 作为 模板 基因 DNA cDNA 程度 互补 配对

通过 PCR DNA 序列 需要 引物 引物 设计 变性 互补 配对 3 末端 朝向 PCR 产物 引物 5 末端 序列 :

meet Fi tere Late Ter Cases: 3 5!

=| 3 MER) i) ia ll ee

预期 PCR

引物 物质 浓度 必须 相等 模板 才能 进行 PCR “对 PCR"。 引物 浓度 反应 使 模板 合成 引物 ,PCR 反应 PCR (Saiki ,1985) PCR (Gyllensten Erlich, 1988); 形式 PCR (Ochman ,1988;,Triglia ,1988) 、RT-PCR cDNA 快速 [ 通常 互补 DNAS! 快速 3 末端 快速 CRACE)] (Frohman ,1988; Froh- man, 1995).

+ 240 -

19 转录 聚合 反应

PCR 反应 循环 循环 温度 显著 变化 25 30 循环 19. 1) 循环

19.1 PCR 理论 指数

a ee) a

2 2 19 524288 1048576 2097152 4194304 8388608 16777216 33554432 67108864 134217728 268435456 536870912 1073741824 2147483648 4294967296 8589934592 17179869184 34359738368

2 指数 (2?)

Seo AN DHF wD | S

1024 2048 4096 8192 16384 32768 65536 131072 262144

: 循环 PCRPMHMICRABA 2", RE n RHCTCKMNRAR. AXMHE, HFS WAdINIPHIRH. & 样品 (92~95°C) 聚合 累计 负面 影响 因素 影响 实际 没有 产物 累积 初期 循环 按照 指数 增长 随后 循环 进入 “平台 ”>。 虽然 聚合 活性 指数 增长 形式 累积

D 变性 目的 使 模板 使 引物 引物 形成 结构 ”。 模板 引物 退火 必需 想得到 PCR 产物 变性 变性 :

模板 5! 3! 3! 5!

| ms 5! 3 srr 45171 引物 2~-LLLH :一 :

变性 温度 模板 配对 (G+C) 含量 模板 反应 进行 优化 基因 DNA 样品 需要 延长 确保 完全 基因 DNA 模板 进行 PCR 失败 开始 模板 没有 完全 变性 影响 循环 效果 短线 DNA 温度 94C 1Imin; 复杂 基因 DNA 需要 10min,

G@ 引物 退火 目的 使 引物 模板 互补 配对 DNA 合成 提供 3 末端 羟基 (3 -OH) 引物 模板 退火 5 末端 确定

© 防止 引物 配对 参阅 19. 5 引物 设计 建议 241 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

完成 〈(RT-PCR 完成 ) PCR WAKA. EB AMT, Rh 温度 超过 任何 引物 (Tu )。 特例 退 温度 通常 引物 计算 Te 1 2 退 :

F 3' age ES

,模板 引物 互补 配对 序列 必须 完全 变性 否则 引物 退火 进行 9。 因此, 退火 温度 PCR 变化 取决 引物 序列 退火 温度 50~68°C, 2min。

© 引物 延伸 目的 引物 配对 沿 模板 进行 延伸 反应 PCR 产物 PCR 产物 合成 核心 步骤 进行 需要 稳定 DNA 聚合 Tag (Thermus aquaticus) Tth (Thermus thermophilus), % TES WY it 进行 延伸 反应 承受 引物 延伸 68 72C 温度 :

|

预期 PCR

循环 反应 超出 5 末端 规定 范围 产生 PCR“ 产物 ”和 “中 ”。 产生 ”, 预期 产物 指数 累积 整个 反应 产生 算术 累积 整个 产物 微乎其微 19. 2) 非特 异性 产物 忽视 稳定 聚合 定性 校对 活性 Taq RA BAR 实验 流程 推荐 混合 (如 同样 作用 稳定 聚合 RE) 提高 产物 确保 精确

#192 PCR 产物 产物 相对

产物 (不 ) ] FF fia] 7 Yy (2n— 2) | (2* 27) 7

循环 (>) |

@ 参阅 19.6 优化 程序 建议 。242

sei wre Se Sh et

19 转录 反应

产物 相对 循环 (7) 6 2 64 7 2 128 8 a 256 9 2 512 10 2 1004 1024 ual 2 2026 2048 12 Z 4072 4096 13 2 8166 8192 14 2 16356 16384 15 2 32738 32768 16 2 65504 65536 17 2 131038 131072 18 2 262108 262144 19 2 524250 524288 20 1048536 1048576 21 2 2097110 2097152 22 2 4194260 4194304 23 2 8388562 8388608 24 2 16777168 16777216 25 2 33554382 33554432 26 2 67108812 67108864 27 2 134217674 134217728 28 2 268435400 268435456 29 4 536870854 536870912 30 2 1073741764 1073741824

TE: 典型 ,PCR 产物 累积 主要 形式 产物 产物 反应 产物 指数 快速 累积 算术 逐渐 累积 。PCR 产物 结束 取决 实际 效率 效率 通常 100%

,PCR 基本 重复 介绍 : 变性 退 延伸 PCR 产物 循环 20 循环 实验 产物 PCR 基础 技术 根本 重复

19.3 反应 基本

基因 DNA 载体 DNA 模板 PCR 简单 原理 RNA 需要 PCR RNA 模板 cDNA 清楚 理解 基因 调控 设计 任何 实验 复杂 复杂 控制 RT-PCR 生物 技术 繁杂 需要 结合 仔细 预先 计划 实验

传统 cDNA 合成 cDNA 合成 目的 RNA 质量 、cDNA 合成 方法 引物 延伸 反应 通过 RNA 结构 结构 行进 PCR 卓越 灵敏 PCR 识别 RNA 显得 重要 克隆

243 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

方法 足够 RNA PCR 引物 克隆 方法 传统 CDNA 合成 技术 Northern 杂交 降解 RNA。

显而易见 ,RT-PCR 反应 RNA CMMLV, AMV, Superscript Mn2+ 依赖 rTeh) 催化 正确 引物 进行 "。RT- PCR 反应 进行 反应 实验 没有 定论 改革 建立 通常 RT-PCR 方法 PCR 反应 体系 包含 RNA 模板 产物 cDNA PCR 反应 方法 优点 反应 反应 盖子 PCR 产物 进行 电泳 使 方法 鉴定 需要 打开 反应 盖子 实时 定量 PCR 需要 电泳 进行 定量

RT-PCR 方法 使 Tad 聚合 Tad 抗体 结合 保持 状态 照常 进行 反应 体系 95C 转录 抗体 释放 活性 Tad RAM. PCR 反应 顺利 进行 方法 同时 催化 反应 (如 rTth) 进行 含有 N- ( ) 甘氨酸 缓冲 进行 PCR 反应 方式 硫酸 缓冲 体系 退火 温度 离子 浓度 动力 范围 保证 特异 减少 优化 需要 使 仪器 研究 反应 理解 减少 RNA 数量 RNA 需求 使 研究 使 单个 细胞 进行 PCR 具有 非常 现实

实验 RT-PCR 特异 问题 参考 方法 使 模式 使 降落 PCR (touchdown PCR) 方法 幅度 提高 反应 异性 PCR 开始 使 退火 温度 Tu 反应 进行 退火 温度 降低 定量 常设 0.5"C 反应 退火 温度 降低 引物 Tm 5C 反应 结果 循环 没有 非特 异性 产物 反应 温度 降低 引物 退火 完全 配对 序列 相互 作用 反应 退 特异 产物 超过 反应 形成 非特 异性 产物 方法 使 容易 产生 非特 异性 产物 引物 反应 特异 19.1).

RT-PCR 反应 体系 反应 产物 RNA + DNA RAK, EH 反应 ,PCR 原理 使 RNA 模板 取代 PCR 循环 开始 变性 PCR 反应 缓冲 提供 环境 使 RNA : DNA ,RNA @8。 使 序列 特异 引物 循环 模板 进行 退火 合成 DNA 引物 找到

@ cDNA 合成 使 传统 引物 oligo(dT),。 is 引物 基因 特异 稳定 cDNA 作为 PCR 模板

@ IECR 传统 SDNA 合成 方法 许多 优点 值得 灵敏 现在 仍然 常用

RNase cDNA 合成 (Gubler Hoffman,1983), RNA 模板 直接 合成 CDNA 沉淀 步骤 复杂 合成 特异 引物 oligo(dT) 混合 随机 nonomers, FU POR 方法 合成 整个 文库 保存 逐渐 完全 鉴定 特征 相反 适当 序列 特异 引物 通过 单一 PCR 产物 方法 PCR。 方法 详细 描述

。244 -

19 转录 聚合 反应

1 4

19.1 降落 PCR。 使 温度 接近 Tu 模板 非特 异性 相互 作用 Tu 温度 逐渐 降低 退火 温度 完全 配对 引物 : 模板 稳定 存在 。(a) cDNA 样品 〈1 5 ) 57 亿 退火 进行 PCR。 引物 产生 单一 365bp PCR 产物 箭头 非特 异性 产物 清晰 6 PCR 标准 (b) cDNA 样品 〈1 6 ) 进行 逐渐 降温 PCR。 退 温度 65°C BEB 55C, 循环 降低 0.5C, 进行 15 循环 1 6 预期 观察 单一 产物 7 空白 8 标准 。(a) (b) PCR 产物 相同 同一 电泳 结果

模板 循环 引物 延伸 反应 产生 cDNA 循环 完成 合成 cDNA 形式 进行 《〈 19. 2). PTPCR 方法

适当 引物 退火

te RG VITITIT 5! 3/4 cDNA VTTITITT PCR mRNA, 合成 cDNA

| >

= = a ee was Se eae Ee

Ena de ieee roc eee eT Tre) | :rn

19.2 RT-PCR, mRNA 通过 作用 生成 CNDA mRNA 模板 降解 。PCR 循环 合成 cDNA 循环 开始 cDNA 选择 引物 进行

PCR 技术 合成 ,cDNA 合成 DNA 聚合 除去 转录 DNA 聚合 共同 增强 结构 结构 影响 合成 cDNA Mn2+ 依赖 rTzA Tag 活性 AMV MMLV 进行 否则 影响 随后 反应 〈Kawasaki,1990)

35 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

认为 RT-PCR 检测 转录 产物 DNA 即使 mRNA 细胞 许多 拷贝 反应 决定 作用 同样 进行 转录 甚至 同一 反应 混合 ,RT-PCR 反应 样品 标准 仍然 重要 ,cDNA 效率 RT-PCR 重要 决定 因素

19.4 实验

RT-PCR 正常 危机 RT-PCR 增加 又, 来自 储备 反应 (amplicon) 污染 增加 解决 实验 样品 准备 PCR 指定 RT 反应 样品 准备 PCR 配备 专用 微量 实验 设备 反应 实验 溶液 任何 东西 实验 移动 实验 19. 3 准备 单独 房间 实际 实验 19. 3 那样 移动 实验 空间 狭小 ,那么 明智 PCR 产物 尽量 实验 工作 停滞

2 i z EER os Hee

19. 3 进行 PCR 工作 实验 箭头 方向 移动 绝对 返回 配备 实验 移动 储备 样品 单方 移动 避免 污染 关键

19.5 引物 设计

进行 PCR, 需要 正确 设计 引物 引物 使 术语 比较 混乱 明确 术语 引物 命名 19. 3 距离 mRNA 模板 3 末端 模板 配对 引物 cDNA 命名 3 引物。 上游 合成 CDNA 互补 mRNA 模板 5 末端 :

mRNA 35-

AAAAAAAAAAA 3 F 引物 命名 5 引物 引物 设计 直接 依据 公布 DNA 基因 DNA, cDNA 基因 合适 反应 任何 核酸 序列 通过 使 正确 设计 引物 DNA 序列 。246 -

19 转录 聚合 反应

DNA 编码 5 3 研究 设计 引物 必须 明了 存在 序列 互补 配对 公布 序列 设计 引物 保证 提取 方向 正确 序列 正确 需要 遵守 基本 原则

19.3 基本 引物 命名 原则

3 引物 (3" primer) (downstream primer) 引物 (Creverse primer)

(Cantisense primer) (一 )

Crick

5'3| (5' primer) 引物 Cupstream primer) 引物 (forward primer) 正义 引物 (sense primer)

(十 )

Watson

: 左边 术语 描述 mRNA5 末端 相关 引物 术语 描述 参与 靠近 mRNA3 端的 引物 使 正式 引物 〈oligos)

D 引物 序列 公布 编码 序列 相同

Q 序列 公布 编码 序列 互补 配对

确保 选择 正确 引物 序列 标明 方向 设计 引物 互补 配对 引物 3 -羟基 末端 相互 指向 需要 序列

原则 RT-PCR 引物 设计 : mRNA 序列 序列 DNA 编码 序列 相同 尿 代替 RT-PCR 引物 选择 oligoCdT) 选择 使 特异 引物 选择 RNA poly(A) 尾巴 RNA 互补 序列 序列 除了 代替 尿 mRNA 序列 相同 特别 值得 注意 引物 序列 书写 方向 5 3 引物 同样 适用 引物 作用 序列

例如 mRNA 序列 :

GAGCCGCACA CCUGGGAUCC GAUAAGAACA CGGAGCGAUU AUUUUAUCUA GCUAUGCUUA GAGAGAUGAC CGAGUAGCGA CUAUUUUACC AGCUUUUUUG CGCGAUCGAC CGAUCGACGA AACAACAACA CCCGCAACAG CACGCGAGCG AGACGAGAUU CUACUAUGGG UAAGUAGAAC CCCAGACGAU CACUCGCUAA CGCUAUCGAG CUAGUAGGAU GCGUGUGCGC UCGCUGCUAG CGCUCGAGGC UAAGUAGAAC CCCAGACGAU AGAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAA

设计 引物 20 产生 PCR 产物 包括 mRNA 6~190 FF AR.

解答 : 5/3| WFR 5’ GCA CAC CTG GGA TCC GAT AA 3'S| WFR «5' ATC GTC TGG GGT TCT ACT TA

便于 阅读 序列 3

信息 公布 序列 数据 相同 物种 相关 基因 序列 目的 基因 编码 蛋白 氨基 问题 : 基因 编码 兼并 氨基 密码

+ 247

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

序列 信息 设计 引物 策略 检查 氨基 存在 编码 氨基 1 2 密码 密码 氨基 〈Met, M) (Trp,W)。 5 6 密码 氨基 少见 使 基因 早已 克隆 氨基 密码 19.4). 密码 情况 特定 物种 密码 使 偏好 直接 核酸 序列 信息 设计 确定 序列 作为 引物 普遍 尽量 避免 使 6 密码 氨基 (包括 丝氨酸 )。 合成 3 引物 5 引物 PCR 尝试 使 进行 验证

19.4 兼并 引物 设计 密码 使

ATG AUG Met 1 M TGG UGG 1 WwW KA RE MK AAT AAC AAU AAC 2 N GAT GAC GAU GAC 2 D TGT TGC UGU UGC 2 c CAA CAG CAA CAG 2 Q BAR GAA GAG GAA GAG 2 E CAT CAC CAU CAC 2 H RAM AAA AAG AAA AAG 2 K AR TUT Tre UUU UUC 2 F MAR TAT TAC UAU UAC 2 ¥ Fe AR ATA ATC AUA AUC 3 1 ATT AUU Si AR GTA GTC GUA GUC Vv GTG GTT GUG GUU ; Ai AB CCA CCC CCA GCC P Cag CCT CCG CCU I BR ACA ACC ACA ACC ae ACG ACT ACG ACU AAR GCA GCC GCA GCC A GCG GCT GCG GCU 甘氨酸 GGA GGC GGA GGC ee 3GG GGT GGG GGU fi Am AGA AGG AGA AGG me: CGA CGC CGA CGC CGG CGT CGG CGU EAR CTA'CTC CUA‘CUCG . L CTG CTT CUG CUU TA TTG UUA UUG 丝氨酸 TCA TCC UCA UCC S TCG TCT UCG UCC AGT AGC AGU AGC 密码 TAA TAG UAA( )

TGA UAG( $8 #4) UGA( 乳白 )

引物 相似 引物 混合

引物 研究 确定 序列 模板 进化 保守 序列 特征 使 。248 -

19 转录 聚合

引物 利于 系列 相关 序列 退火 反应 循环 具体 序列 特征 差异 引物 : 5'GGN CCG TCR TCR AAW GTC ARG TA, KEW 23 3 、9 、12 、15 20 变化 引物 64 乘积 19. 5) 实际 包含 64 64 形式 互补 配对 基因 生物 保守 引物 特定 物种 基因 特异 引物 增加 异性 降低 序列 产物 方法 引物 形成 作用 设计 引物 确定 代替 显著 降低 蛋白 序列 相应 基因 序列 使 引物 订购 合成 引物 使 19.5 引物 标准 符号

19.5 引物 设计 标准 缩写

ARF A A 1 hel G C 1 +f G G 1 ie 0 1 RR U U 1 Ke I I 1 RS A/G R 2 We EK EF C/T Y 2 , A/C M 2 Sf. Mt G/T K 2 , A/T WwW 2 WF. SF C/G S 2 AF. SF. A C/G/T B 3 ARE. SF Matt A/G/T D 3 Ae EF . MEP. Ha er A/C/T H 3 , , A/C/G Vv 3 任意 A/C/G/T N 4

TE: 特殊 习惯 缩写 合成 PCR Sit aes S| yt Ie eT AR a AY fi FE

“多 ”PCR 引物 同时 引物 反应 温度 符合 引物 Tm 范围 重要 解决 方法 设计 引物 Tm 设计 认为 引物 使 方法 降低 杂交 温度 方法 减少 参与 完全 配对 引物 方法 非特 异性 配对 产生 序列 剔除 情况 模板 相配 容易 形成 单个 模板 结合 影响 引物 退火 随后 延伸 反应 进行 反应 循环 退火 温度 降低 S~ 10°C 策略 使 存在 稳定 模板 结合 使 PCR 进行

249 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

19.5.1 基本 标准

合成 PCR 引物 需要 注意 设计 引物 考虑 周公, 反应 验证 作用 引物 真正 引物

CD 通常 引物 模板 20 25 使 引物 增加 动力 行为 难以 预测 使 引物 产生 非特 异性 退火 引物 异性 程度 上, 引物 特异 引物 同时 保证 引物 特异 采用 指数 规则 :

4x >Y “4 引物 数量 ;

X 引物 ;

Y 物种 基因

例如 基因 6. 6X10?bp〈 细胞 6pg DNA), At, 4X>6.6X 10°, FRE X 理论 17 引物 17 序列 唯一 DNA 序列 避免 干扰。 6. 6 X 10° bp FARE. SRL, B17 仍然 灰色 产生 灵敏 问题 设计 引物

@ PCR ,引物 Tn 相配 序列 相符 重要 。Tn 变化 针对 引物 严重 影响 反应 产物 特异 产量

@) 3' 端的 致命 。3' 倒数 使 顺利 进行 需要 模板 完全 配对 3' -羟基 作为 添加 如果 设计 引物 3' 模板 配对 选择 基因 作为 原来 引物 5' 3'

® PCR 产物 添加 序列 引物 突出 序列 序列 通常 DNA 测序 引物 、RNA 转录 启动 PCR 产物 识别 序列 竞争 PCR 20 )

© 引物 序列 检查 重复 互补 现象 现象 引物 产生 自身 结构 使 游离 引物 浓度 显著 降低 产物 仅仅 识别 问题 杂交 迅速 优先 空间 距离 互补 序列 进行 配对 5 末端 3' ;, 问题 严重 程度 取决 退火 温度 导致 正确 错误 非特 异性 使 引物 5 3’ Rae 游离 引发 “PCR 引起 插入 ”并 产生 产物 ;网 提供 免费 软件 帮助 序列 简单 方法 搜索 引擎 搜索 免费 引物 鉴定 工具 “引物 相关 关键 找到 提供 Tm 形成 倾向 服务 有趣 引物 序列 结果 验证 方法 设计 引物 循环 工作

© 引物 合成 检查 它们 3' 序列 没有 互补 ,引物

*。 250 -

#$19S RHERRARERW

生成 引物 使 预期 PCR 产物 减少 :

ay i 5! 1

引物 预期 PCR

3 末端 GC 检查 形成 引物 改变 引物 1 2 解决 问题

@ 设计 引物 〈G C) 含量 平均 范围 基因 〈G C) 含量 41%%。 实验 设计 引物 平均 (G+C) 含量 40%% 50%% 参数 配对 形成 3 TSAR. MPA CARA 2 引物 (G+O) 含量 平均 范围 避免 引物 引物 模板 结合

设计 引物 平均 比例 引物 集中 集中 避免 引物 模板 退火 模板 效率 端的 产生 差异

@ 避免 使 重复 序列 ,,5 ATG ATG ATG ATG ATG ATG, 产生 特异 问题

@ 引物 3 末端 5 数目 超过 2

@ 引物 3 末端 通常 提高 PCR 反应 效率

i9.5:2. T..

引物 单独 特征 重要 引物 反应 共同 作用 同等 重要 重要 模板 特异 模板 动力 稳定 引物 共同 作用 进行 RT-PCR 反应 适当 平衡 引物 引物 协作 行为 Ta 描述 。Tnm 指引 模板 50% 退火 50 退火 温度 ,Tm 引物 模板 模板 结合 平衡 温度

Tm 引物 溶液 离子 (Nat) 浓度 快速 计算 引物 Tm 方法 胸腺 2C, 4C

2 GATE4aekGaacC)

方法 11 28 引物 计算 温度 超过 68C 算法 适用 方法 广泛 估算 引物 引物 To 公司 合成 提供 氧化 lmol/L 50mmol/L Ta 使 研究 PCR 灵活 使 引物 作为 筛选 文库 Southern 印迹 实验 杂交 依据 引物 Tn 进行 搭配 引物 正式

° 251 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

合成 按照 原则 引物 序列 进行 检测 预测 它们 行为

Tm 退火 平衡 显然 希望 引物 模板 完全 配对 仅仅 50% fe 引物 Tu 计算 PCR 循环 退火 温度 《Ta)。 使 引物 退火 特异 退火 温度 Tm Ta Im 5C。 Tm 5C 产生 正确 产物 退火 温度 Tm 10C 进行 实验 模板 降低 退火 温度 忍受 牢记 退 温度 特异 引物

19.6 @ #2 %

目前 PCRRACAR—EMEB REDE AS BAT OTE DSW. BH fa}, PCR 技术 使 细胞 生物 问题 解决 方法 遵循 原则 改进 。PCR 广泛 重复 反应 优化 紧密 相关 使 引物 需要 反应 进行 优化

PCR 存在 潜在 困难 显而易见 隐藏 问题 事项 ,PCR 效率 特异 参加 反应 AK.

O 混合 准备 标准 方法 反应 事先 反应 混合 反应 剩余 反应 混合 使 消除 吸取 溶液 引起 误差 差异 PCR 反应 体系 包括 10mmol/L Tris-Cl, pH 8.3 (20°C); 1. 5mmol/L MgCh ; 50mmol/L KCl; 200umol/L dNTP; 0.5pmol/L 引物 ; 100nl 体系 2.5U Tag FEE Bie A 10° ~10° 拷贝 lwg) 模板 变化 参数

阳离子 使 没有 MgCl 10XPCR 反应 注意 离子 离子 dNTP 模板 负电 ) 提高 反应 效率 特异

@ 模板 质量 。PCR 引物 DNA 片段 ,PCR 方法 降解 DNA RNA 模板 敏感 降解 严重 PCR 进行 电泳 检测 模板 质量

® 引物 。PCR 引物 0. 1~1. 0kmol/L, 使 浓度 引物 产物 急剧 减少 合成 引物 退火 温度 接近 Tu 情况 没有 产物 生成 降低 退火 温度 进行 反应 ;如 仍旧 反应 马上 放弃 引物 选择 引物 序列 合成 定购 没有 限制 引物 状态 运输 使 TE 溶液 (10mmol/L Tris. pH 8.0; 0.lmmol/L EDTA) 进行 溶解 PR Vea > HEE Fb CE Faz S| RE. OR ES eb RP RS OE ADI 准确 实验 准确 确定 引物 浓度 进行 PCR 关键 使 导致 错误 产物 合成

关于 引物 纯度 引物 纯度 效率 特异 基本 252 -

19 转录 聚合 反应

纯化 合成 保护 末端 缺失 引物 影响 产物 生成 产生 严重 影响 引物 纯化 方法 合成 引物 费用 当中 包括 纯化 方法 费用 想得到 纯化 引物 需要 额外 费用 引物 纯化 方法 : 脱盐 纯化 色谱 CHPLO), & 丙烯 酰胺 电泳 (PAGE)

a. 脱盐 费用 通常 包括 引物 合成 费用 目的 除去 残留 物质 引物 合成 脱离 合成 35 引物 满足 PCR 35 引物 引物 纯度 需要 进一步 纯化

b. 纯化 快速 方法 引物 纯度 HPLC 纯化 相近 方法 引物 5 末端 DMT ) 末端 短缺 引物 没有 它们 纯化 适用 50 引物 纯化 HPLC 纯化 引物 提高 定量 特异 突变 反应 效率

c. 通过 HPLC 纯化 引物 纯度 通常 超过 95% 原理 相同 HPLC 纯化 lxmol) 引物 适用 50 引物 增加 纯化 步骤 HPLC 纯化 引物 额外 1 2

d. PAGE 纯化 终极 纯化 方法 使 方法 纯化 引物 纯度 达到 99% 酰胺 序列 单一 差异 50 100 引物 使 方法 进行 纯化 回收 引物 PAGE 纯化 引物 方法 需要 额外 1 2

e. 方法 除了 合成 引物 纯化 存在 量化 物质 除了 细胞 毒性 细胞 体内 实验 检测 实验 纯化 方法 方法 单独 使 结合 方法 共同 使 使 除去 引物 残余 物质 末端 缺失 序列 引物 溶解 适合 缓冲 定量

@ 反应 模板 PCR 试剂 测试 PCR 试剂 含有 模板 引物 验证 反应 体系 作用 问题 反应 引物 设计 降解 模板 使 反应 产生 产物 物质 抑制 PCR 进行 : 苯酚 氯仿 (SDS) 、N- A. BR. CB. RHR. EDTA 矿物

© 样品 准备 足够 实验 使 模板 准备 体系 准备 PCR 分开 房间 实验 难以 实现 污染 危险 (PCR 遗留 ) 实验 模板 准备 PCR 循环 特定 必须 注意 哪些 管子 移动 哪些 移动 方向 设计 进行 样品 准备 结果 移动 清洁 纯度 体系 准备 ) 纯度 模板 准备 ) 纯度 循环 放置 )

19. 3 流程 方向 移动 PCR 样品 污染 注意 实验 设备 微量 离心 实验 随便 移动 DNA RNA 作为 模板 PCR 注意 污染 影响

。253 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

结果

@ 阳性 阳性 污染 反应 储备 反应 产生 影响 尽量 减少 阳性 数量 阳性 结果 反应 产物 模板 污染 储备 反应 通过 观察 电泳 结果

判断 阴性 反应 电泳 阴性 选取 实验

© 污染 防止 微量 引起 污染 尽量 使 容积 (positive displacement micropipette tips) (图 19. 4) 当然 使 滤芯 防止 模板 溶胶 容易 进入 反应 储备 反应 产物 产生 使 污染 溶液 微量 造成 注意 正确 吸取 溶液

19.4 PCR 使 。(a) 标准 滤芯 〈Rainin) “pribwese toe 。(b) AFH (Tri-Continent Scientific) 微量 防止 形成 使 方法 形成 必需 微量 污染 造成 面积 污染

O 循环 。PCR 优化 实验 进行 同一 循环 进行 仪器 反应 效率 差别 仪器 优化 反应 仪器 产生 完全 PCR 产物 使 仪器 存在 观察 反应 突然 进行 检查 改变 事先 PCR 程序 优化 循环 参数 进行 修改 反应

@ 循环 参数 特殊 反应 距离 PCR, 《〈 变性 退火 ) 循环 温度 循环 利于 反应 重复 退火 温度 65" 使 温度 循环 通常 温度 68~72°C 退火 延伸 合成 程序 :

模板 94°C 2min

变性 94°C 15s

退火 /延伸 94°C (70) 15s S01 int 保存 4°C co

因为 Tu AMOK IID SMR YER. Bob. PCR 稳定 ethic 聚合 活性 灰暗 -N- (UNG)。 抑制 遗留 污染 模板 简单

PCR 反应 体系 含有 dUTP, 作为 dTTP PCR Py ep ae PR : 254 -

19 转录 聚合 反应

胸腺 正常 ,UNG 反应 生成 含有 尿 含有 胸腺 模板 UNG 受到 影响 dUTP 存在 PCR 特异 效率 没有 影响 UNG 变性 破坏

PCR。PCR 室温 准备 升温 94C 循环 反应 体系 升温 94" 72'C 72C 引物 延伸 “〈 Taq 聚合 ) 温度 使 引物 模板 完全 配对 严谨 ), 非特 异性 PCR 产物 生成 防止 情况 许多 策略 抑制 循环 开始 产物 合成 引物 模板 完全 变性 方法 使 抗体 抑制 聚合 活性 直到 抗体 变性 TaqStart 抗体 (Clontech) Jump- Start Taq(CSigma) 方法 使 反应 使 AmpliWax (Perkin El- mer), 使 熔化 混合 使 PCR 开始 进行 许多 公司 它们 启动 方法 抗体 基础 重要 反应 75 反应 体系 当中 方法 实用 启动 反应 因为 触摸 反应 烫伤 研究 愿意 选用 抗体 稳定 抗体 模板 完全 变性 抑制 聚合 启动 技术 任何 RIT-PCR 基础 实验 重要 使 “困难 模板 ”进行 反应 关键

@ 混合 典型 cDNA 合成 许多 传统 问题 延续 RT-PCR 领域 盛行 解决 方法 进行 混合 混合 混合 合成 基因 PCR 产物 获得 巨大 距离 PCR 设计 基因 PCR 产物 4kb。 实验 使 非常 技术 那些 表达 mRNA、 细胞 mRNA 剪接 均一 RNA (hnRNA) cDNA。 典型 混合 Taq 聚合 Pwo. Tag 聚合 具有 5 > 聚合 活性 ), 95 半衰期 40min, 没有 3 5 核酸 活性 活性 )。 Taq 聚合 没有 校对 活性 错误 错误 稳定 PCR 稳定 球菌 (Pyrococcus) 稳定 校对 。Taa 聚合 混合 修饰 缓冲 )》 单独 使 任何 获得 效率 循环 超过 30 达到 35 40 AMA, Tag 聚合 接替 因此 PCR 产物 积累 方法 尤其 适用 检测 转录 产物 19.6 常用 PCR 定性 公司 混合

19.6 PCR 选用 定性 ~ se

Taq Thermus aquaticus 95°C 40min

fig Thermus flavus 95°C 40min 没有 Tth Thermus thermophilus 95°C 20min 没有 Tli Thermococcus litoralis 100°C 2h A P fu Pyrococcus furiosus 100°C 2h Pwo Pyrococcus woesei 100°C 2h Deep VentR Pyrococcus GB-D 95° 23h A Vent Thermococcus litoralis 95°C 6. 7h Stoffel fragment Thermus aquaticus 95°C 80min tA

° 255 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

® 优化 试剂 购买 商业 试剂 试剂 增强 PCR Sigma No. OPT2, 系统 含有 10X 7 增强 PCR 辅助 , 杆菌 结合 蛋白 〈Chou,1992)、 酰胺 (Sarkar $, 1990), MME (Olive 等,1989) 血清 CBSA) (Paabo ,1988)、 CWinship, 1989; Cheng ,1994) (Rees ,1993; Henke ,1997)、 〈Cheng ,1994)。 19.7 辅助 PCR 影响 特定 模板 引物 进行 优化 选择 合适 10X 使 足够 产物 没有 非特 生成 辅助 反应 进行 修饰 使 反应 节省 金钱 19.7 ”辅助 PCR 增强 作用 PCR 辅助 工作 浓度 E. We Bi AR Be 15~30mmol/L | 影响 模板 引物 变性 退火

减少 GC

血清 蛋白 (BSA)( 乙酰 形式 ) 稳定 Taq

(DMSO) 减少 模板 ,有 利于 1. 25% ~10. 0% 增加 GC 模板 特异

甘油 15%~20% 增强 Tag 稳定 ,降低 模板 Tm 结合 蛋白 (SSBP) 引物 退火 ,抑制 引物 延伸

C6) 避免 使 矿物 反应 体系 降低 反应 重复 进行 PCR 使 循环 使 矿物

19.7 PCR 产物

琼脂 方便 1 %% 3% 快速 PCR PCR 产物 通常 选用 琼脂 方法 熔化 冷却 55C 电泳 使 SYBR SR, 灵敏

公司 琼脂 标准 琼脂 琼脂 琼脂 专门 PCR 产物 实验 通常 使 SeaKem GTG (Cambrex), 1X Tris- -EDTA(CTAE) 配制 2.5% 3.0%% 溶液 浓度 琼脂 检测 200 ~~ 1000bp PCR 产物 微波 浓度 注意 微波 正在 特别 容易 沸腾 减少 沸腾 琼脂 TAE 缓冲 放置 5~10imn 使 琼脂 颗粒 吸水 膨胀 心地 琼脂 制备 浓度

特别 防止 沸腾 造成 伤害 烧瓶 广 口上 煮沸 使 电炉 尤其 注意

19.8 RT-PCR 质量 监控

使 样品 进行 PCR 常会 问题 模板 完整 问题 使 RNA 作为 模板 意义 那些 研究 基因 表达 实验 256 -

FIVE 反应

PCR 技术 转录 产物 使 引物 参数 进行 优化 89。 使 准备 RNA 样品 曾经 RNA 样品 进行 实验 产物 头疼 事情 需要 结合 优化 策略 注意

© 使 检测 RNA 质量 清楚 显示 18S 28S RNA (rRNA)。 溶液 乙醇 沉淀 保存 RNA 降解 非常 迅速 样品 反复 情况 急剧 恶化 实验 纯化 RNA 65C 5min, 然后 进行 〈1. 2%% ,1XTAE ; 变性 );, 目的 验证 RNA 完整 )。 18S rRNA 28S rRNA 亮度 相当 放心 使 AY

@ 反应 体系 引物 模板 检测 确定 反应 储备 污染 引物 生成

@ 反应 体系 模板 引物 进行 检测 确定 引物 检测 引物 配对 特异 唯一 方法 19. 5 显示 合成 引物 进行 质量 监控 实验 精确 结果

be 2 3. 4 GOO7ESORLOL2SIG 14: 15) 16

19.5 引物 自身 引导 检测 合成 引物 测定 它们 自身 引导 作用 2 6 : 100ng 同样 CDNA 5 引物 PCR 反应 体系 10 14 : 100ng 同样 同样 CDNA 3 引物 PCR 反应 体系 7 15 阴性 引物 ), 8 空白 9 阳性 , 1 16 PCR 标准 5 引物 反应 体系 产生 HH) PCR 产物 5 引物 具有 自身 引导 作用 5 引物 需要 重新 设计

进行 合成 反应 反应 体系 检测 RNA 样品 使 样品 作为 模板 进行 PCR。 样品 “无 RT “RT- ”对 没有 产物 生成 RNA 样品 没有 吸取 溶液 没有 污染, RNA 样品 含有 基因 DNA 污染 实验 进行 RT-PCR RNA 样品 进行 DNase 5), 进行 RT- 实验

© 直接 实验 目的 引物 检测 难以 检测 RNA。 特定 生物 材料 完整 RNA, 通过 反应 产生 PCR 产物 通过 使 常用 引物 BAL

@ 5 RT-PCR 相关 技术 20 22 详细 介绍 257

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

蛋白 GAPDH, 确定 问题 RNA 样品 产物 s :如果 引物 PCR 产物 非常 明显 实验 引物 产生 PCR 产物 原因 比较 没有 信号 意味 没有 转录 产物 RNA 样品 产生 情况 通过 使 进行 排除

© 确认 正常 产物 检测 预期 预期 产物 通常 优先 造成 情况 引物 物质 超过 引物 事实 情况 非常 容易 解决 重新 检查 引物 浓度 随后 实验 使 相同 浓度 引物 原因 产生 正常 消失

明智 选择 阳性 模板 产物 必须 容易 实验 样品 产物 明显 反应 储备 工作 停止

19.9 相关 技术

19.9.1 cDNA 5 末端 快速 PCR

传统 cDNA 合成 方法 关键 障碍 mRNA 5 末端 序列 cDNA 问题 原因 合成 EDNA PCR 引物 设计 原理 限制 5' 序列 克隆 序列 确定 转录 〈TSS) 准确 RACE (cDNA 末端 快速 ) 方法 (Frohman ,1988), 知道 转录 产物 序列 克隆 5 末端 (5 RACE) 、3/ (3'RACE) cDNA 序列

5'RACE 策略 方法 同样 包括 使 进行 EDNA 合成 引物 oligoCdT), 转录 产物 5 末端 配对 基因 特异 引物 3 游离 羟基 才能 转录 反应 进行 特定 末端 脱氧 合成 CDNA 作用 cDNA 3 末端 脱氧 核糖 转移 通常 “未 转移 ">, DNA 平头 3' 3' 模板 依赖 方式 19. 6 序列 9。 添加 反应 ; ,poly(G) poly(C) ) 退火 进行 PCR.

DNA iD ct nh A a a nae 3 5! dGTP | 转移 TOOECEEEEEETE ET 19.6 末端 脱氧 核糖 转移 作用 特殊 模板 依赖 方式 端的 DNA 3’ 末端 活性 许多 PCR 克隆 方法

@ 方法 PCR (Loh ,1989) PCR, 258

19 反应

FE, poly(A) 序列 poly(T) 引物 退火 使 方法 ,PCR 需要 基因 特异 引物 )。 方法 主要 任何 通过 生成 cDNA 作为 使 完全 5 末端 缺失 cDNA 参加 反应 引物 常会 阳性 现象

”克隆 转录 产物 5 末端 方法 RNA 连接 RACE (RLM-RACE) (Maruyama Sugano,1994; Shaefer,1995) 方法 彻底 解决 问题 检测 拥有 完整 5 末端 CDNA 缺失 CDNA 降解 转录 产物 延伸 cDNA 没有 作用 方法 降解 mRNA 5 通过 T4 RNA 连接 序列 RNA.

RLM-RACE 19. 7 电泳 检测 确认 RNA 样品 质量 RNA 样品 磷酸 (calf intestinal phosphatase, CIP) 5 - 。CIP 作用 影响 5 帽子 结构 那些 5 末端 帽子 结构 降解 mRNA 磷酸 反应 破坏 转录 产物 5

5’ ™G pppN

使 引物 基因 特异 引物 进行

19.7 RLM-RACE 反应 原理 适用 5 帽子 完整 mRNA 克隆 RPA RMA, FER RAT. FF ERE AR AGAR (CIP) 降解 mRNA 5 -磷酸 烟草 磷酸 (TAP) mRNA 帽子 连接 5 -磷酸 ; 然后 RNA 接头 进行 连接 mRNA、 mRNA

RNA 接头 cDNA RLM-RACE 检测 转录 非常 工具

° 250" «

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

羟基 草酸 (tobacco acid pyrophosphatase, TAP) 作用 5 帽子 除去 o BEAN BENG KE. mRNA 5 末端 磷酸 作为 T4 RNA 连接 mRNA 连接 RNA 序列 (作为 接头 ) 降解 反应 开始 参加 反应 因为 5 羟基 磷酸 序列 RNA 进行 RNA 引物 退火 进行 序列 特异 引物 配对 cDNA 才能 产物 。RLM-RACE 方法 优点 使 引物 设计 严格 遵循 平均 、(G C) 含量 平均 引物 设计 基本 原则 cDNA fie S| WAY (GTO) SH, BAH 100%, 0% 实验 研究 当中 使 RLM-RACE 方法 基因 转录 (Bassett ,2004)

19.9.2 cDNA 3“ PCR

转录 产物 3' 序列 克隆 (3'RACE) 通常 没有 5'RACE 那么 困难 。3 RACE

方法 使 mRNA 合成 引物 结构 : 5/- 序列 -TuV-OH 3’

© 序列 oligo(dT) 5 端的 序列

@ Trike Ri PEA oligo(dT) 增加 )

@ 引物 3 末端 V 19. 5)

结构 引物 引导 poly(A) 5 mRNA 编码 5 - 序列 -TVN-OH 3’, 46 3 末端 稳定 。cDNA 合成 使 配对 引物 ) 基因 异性 引物 ) BE CDNA 19. 8) 使 oligo(dT)

a 合适 引物 退火

Me we a 使 适当 引物 进行 PCR

mRNA3 序列 PCR 19.8 3RACE。 使 方法 mRNA 3' 序列 方法 传统 5 RACE 方法 RLM-RACE 简单 使 5' 接头 oligo(dT) 引物 使 引物 定位 poly(A) 5 cDNA

5 序列 特定 3 引物 退火 * 260 -

19 转录 聚合 反应

4 3' RACE 根据 使 AT 序列 作为 引物 oligo (dT) & (A+T) @BIKBTS 100%.

19.9.3 Sst PCR

通常 产生 PCR 产物 原因 模板 普遍 模板 解决 方法 反应 没有 产生 PCR 产物 溶液 1 : 100 稀释 反应 进行 30 循环 简单 增加 反应 循环 包括 引物 Rist PCR 方法 广泛 结果 模板 纯度 问题 明显

PCR 方法 引物 ) 设计 Ob 引物 ) 域内 序列 引物 相对 19. 9 首先 使 引物 30 循环 溶液 稀释 ) 使 引物 进行 25 30 PCR 通常 满意 结果 设计 引物 引物 合成 原则 引物 进行 仔细 检查

引物 引物 Shek 模板 5’ 3" : —— | 引物 引物 | PCR 产物

19.9 Sask PCR。 PCR 产物 纯度 问题 需要 设计 引物 PCR 反应 使 引物 使 引物 识别 引物 产物 稀释 溶液 进行 方法 减少 产生 非特 异性 产物 增强 反应 特异

19.10 实验 : CDNA 合成

实验 进行 电泳 检测 RNA 模板 质量 © 制备 混合 1。

oligoCdT)1?~18(1. Ong/pD Ll dNTP(10mmol/L) 体积 8ul 随机 引物 (2. Opg/pl)@

@ 混合 1 反应 8 @ MA 2p] RNA 样品 8 (50~1000ng; 确保 )

@ 反应 配制 混合 ,应 混合 配制 , 吸取 溶液 产生 微小 误差 标准 操作 ,确保 足够 体积 混合 准备 PCR 混合 遵循 原则

@ , lsmol/IL( 体积 ?的 基因 特异 引物 代替 oligo(CdT) /或 随机 引物

@ RNA 直接 混合 混合 RNA 样品

。261

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

® RW EE 70°C HH Smin, RNA 变性 完成 样品 2min。 © RNA MABE HO), tlt ARGH 2.

|

AMV (20U/pl) 体积

© 变性 RNA 样品 混合 2, 10ml。

(2 '5min。

注意 短暂 室温 目的 ,@ 利于 模板 引物 退火 @ 使 获得 随机 引物 /或 oligo(dT) 延伸 便 定性 通常 获得 cDNA

使 稳定 增强 ,50C 50min。 样品 37°C BK 42°C 7K YG 60min,

ER ”许多 进行 CDNA 合成 许多 公司 现货 选择

@g 样品 95C 5min, 转录 没有 PCR 产生 持续 影响

© 合成 cDNA 准备 进行 RT-PCR ,cDNA 使 207C 保存

10 X i tt B op KO RNasin(20U/pl)

19.11 ¢$244: PCR ££ 4 te CDNA

DO 获得 许可 公司 购买 PCR 试剂 它们 制备 PCR 混合 通常 制备 50pl 体系 : Spl 10XPCR 缓冲 Mg2+ );, 3pl 25mmol/L MgCl 优化 ), 0. 1umolL 引物 ); 浓度 0. Ipmol/L ); 0. Sul Tag DNA 聚合 反应 1. 0 2. 5U); 48 yl,

注意 1 反应 序列 混合 引物 反应 相应 引物 样品 使 同一 cDNA, 直接 PCR MBAR

注意 2 CDNA 混合 保留 cDNA 溶液 使 相同 模板 引物 进行 PCR。 使 目前

GO 混合 定数 反应 4811。

@ 反应 2ul 相应 CDNA 产物

使 没有 循环 反应 30] 矿物 使 循环 矿物

注意 使 矿物 影响 反应 重复

© 使 通用 循环 程序 参数 Applied Biosystems 9700 循环

@ 10 ;:100mmol/L Tris, pH 8. 3;500mmol/L KCli40mmol/L MegCl 缓冲 流通 提供 .

2 -

19 ,” 转录 聚合 反应

优化 循环 参数 使 引物 进行 优化

模板 94°C 2min

循环 变性 94°C 30s 退火 @ 55°C 30s fo 延伸 13 1min

延伸 tae 5min

保存 4C 即将 使

© 取出 体积 整除 数量 反应 〈50nwl 反应 体系 取出 Su), 电泳 装置 电泳 检测 产物 。PCR 产物 使 配制 1XTAE 缓冲 2% ~3.% AY BRA Be BE RE

19.12 PCR 产物 克隆

情况 ,PCR 技术 DNA 序列 取代 传统 载体 -插入 片段 连接 方法 相同 产物 需要 使 相同 引物 进行 PCR Bay, 克隆 PCR 产物 : 利于 测序 ,@ 利于 体外 转录 ;四 PCR 产物 使 重组 蛋白 表达 体外 转录 克隆 ; 使 修饰 含有 适当 5 序列 引物 PCR 产物 进行 重新 使 载体 。PCR 直接 琼脂 反应 试剂 PCR 产物 纯化 试剂 操作 简单 : 目的 iAP (GTC) 溶液 溶化 ;或 直接 PCR 反应 环境 ,PCR 产物 硅胶 结合 〈Vogelstein Gillespie,1979) 反应 深化 琼脂 DNA 浓度 TE (10mmol/L Tris, pH7.5; 0.lmmol/L EDTA) 硅胶

Qn RY i ETT ERE. ALP TT EB] EGE FE. Tag DNA 聚合 非常 特点 合成 产物 3 末端 A。 TA 克隆 简便 方法 提供 基础 A 突出 Tag 产物 3 末端 abi AT 突出 载体 退火 进行 连接 反应 19. 10) 公司 购买 制备 载体 含有 选择 标记 (如 Amp’, Tet’ Kanr), / lacZ 基因

使 A 产物 进行 克隆 优点

使 A 产物 进行 克隆 克隆 PCR 产物 序列

@ 使 产物 合成 5 突出 限制 序列 引物

@ PCR 产物 纯化 虽然 必需 相当

@ 合适 退火 温度 (T,) RRIMAHBRERY TT. 参考 合成 引物 厂商 提供 引物 使 T.=Ta 5C ,Tan 通过 公式 Tu=2C(AT+TT) 4C(G C) 快速 估算 ,Ap- plied Biosystems 9700 循环 Tn

* 263 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

末端 A 插入 片段 _A

A

T T

末端 T 载体

19. 10 TA 克隆 使 Tag 聚合 PCR 产物 3 末端 突出 非常 利于 末端 突出 线性 载体 进行 连接 载体 常见 ,PCR 产物 克隆 DNA 测序

转化 原核 细胞 细胞 研究 表达 PCR 产物 彼此

® 克隆 载体 含有 lacZ 基因 进行 /

© 使 酸化 PCR 产物 引物 5 磷酸 ) 进行 定向 克隆

© 载体 克隆 通常 连接 利于 使 限制 切除

连接 反应 需要 T4 DNA 连接 作用 进行 PCR 使 具有 .3 5 活性 活性 ) 产生 末端 PCR 产物 FTA 克隆 问题 解决 原来 PCR 产物 进行 纯化 校对 活性 : 氯仿 使 PCR 产物 纯化 试剂 ) 末端 PCR 产物 Taq ¥ 72C 10min, 进行 纯化 进行 降低 反应 效率

19.13 $254: FKBPCRAMHKBHA

® 纯化 PCR 产物 使 PCR Pure Kit, Roche), Q) 制备 :

末端 PCR 产物 10. Onl 7. Opl 10 反应 缓冲 (Mg2+ ) 2. Onl 10mmol/L dNTP 混合 0. Syl Taq 聚合 0. Syl

@ FEF 72°CHF 15min. ® 按照 操作 PCR 产物 @) 纯化 PCR 产物 20 保存

19.14 $2474: TA 克隆

增加 克隆 效率 PCR 产物 2 3 连接 反应 插入 片段 比例 影响 连接 效率 注意 建议 使 进行 连接 反应 需要 片段 需要 转化 通常 进行 连接 反应

© 按照 连接 反应 插入 片段 比例 研究 。264 -

19 “” 转录 聚合 反应

T4 DNA 连接

lul 10ng 0. Ll yl Lpl 10ng 1. Opl yl 1 10ng 2. Ol Oyl

@ 连接 微量 使

@ 16C 3h。

注意 “为 转化 克隆 反应 通常 反应

融化 80C 感受

注意 ”感受 细胞 事先 买好 制备 菌株 使 / 筛选 系统 ,JM109 菌株 杆菌 感受 细胞 (Promega) 符合 需要

@ 吸取 20pl 感受 细胞 微量 离心

© 1pl 连接 反应

G@ 反应 20min,

反应 42 45s, 摇动 管子

注意 ”在 步骤 重要 决定 转化 使 推荐 温度

@ 马上 管子 2min。

@ 4000p] 室温 LB 培养 SOC 培养 @

@ 37°CH ARF (200r/min),

R10~100pl 转化 反应 含有 相应 抗生素 LB 琼脂 平板 使 转化 反应 4C

@ 玻璃 转化 反应 尽量 均匀 培养

@ 平板 放置 5min, 使 溶液 充分 琼脂 吸收

© 倒置 平板 37C

© 早上 平板 培养 取出 减少 卫星 菌落 形成

检测 平板 菌落 转化 使 牙签 8 检测 菌落 接种 100n1 PCR 反应 混合 : 10.0pl 10 X PCR 反应 缓冲 Mg?*); 2p1 10mmol/L dNTP; 0. 5ymol/L ); 0.5pmolL 引物 (体积 );, 1lpl Tag 聚合 98ml。

注意 1 PCR 步骤 使 反应 细菌 细胞 使 引物 质粒 模板 插入 ) 识别 配对

注意 2 反应 抑制 牙签 接触 菌落 表面 足够

8 使 矿物 反应 表面 使 生成 PCR 产物 同样 参数

Lpl

@ LBS (Ft): 10g RAM, Sg 酵母 提取 ,10g NaCl; MIEKA. SOC HHH (EH): 20g RAM, Se 酵母 提取 ,0. 6g NaCl, 0.19g KCl, 2g MgCl, 2.5g Mg SO 3. 6g 葡萄 ;,

@ 报道 品牌 含有 PCR 抑制 使 木质 牙签 克隆 进行 反应 抑制 检测 简单 解决 使 塑料 牙签 接种

¢ 265

RNA 研究 方法

RNA 鉴定 实验 指南

进行 反应

@ 完成 定量 反应 10pl) EFT Sa EE IB HK 含有 片段 菌落 克隆 PCR 产物 相同 片段

® 生成 PCR 产物 原始 菌落 剩余 菌落 重新 划一 平板 保存 制备 甘油

19.15 TOPO % f

TOPO 克隆 方法 CInvitrogen) 广泛 克隆 PCR 产物 DNA 方法 。TOPO 克隆 关键 使 Vaccinia 病毒 拓扑 作为 序列 特异 限制 (CCCTT) 作为 连接 方法 快捷 室温 5min, 获得 95% WH MMR. TOPO 克隆 方法 适用 TA 克隆 克隆 定向 克隆 克隆 TOPO 载体 选用 。IOPO 载体 线性 [也 通过 3'- (Shuman, 1994); 载体 “活化 ”载体 TOPO 载体 相连 ,DNA if 片段 需要 游离 5 末端 羟基 生成 PCR 产物 引物 5 -磷酸 EDNA、 DNA 限制 切片 5 末端 磷酸 必须 先进 磷酸 容易 操作 使 TOPO 载体 进行 连接 得, 按照 需要 5min。 进行 连接 反应 [就 重组 质粒 脱离 操作

.06

Bassett, C. L., Nickerson, M. L., Farrell, R. E., Jr., and Harrison, M. (2004). Multiple transcripts of a leucine-rich repeat receptor kinase from morning glory originate from different TATA boxes in a tissue-specific manner. Molecular and General Genomics 271(6), 752.

Cheng, S., Fockler, C., Barnes, W. M., and Higuchi, R. (1994). Effective amplification of long targets from cloned inserts and human genomic DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. 91, 5695.

Chou, Q. (1992). Minimizing deletion mutagenesis artifact during Taq DNA polymerase PCR by E. coli SSB. Nucleic Acids Res. 20, 4371.

Dieffenbach, C., and Dveksler, G. S. (Eds.). (2003). “PCR Primer,” 2nd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.

Frohman, M. A. (1995). Rapid amplification of cDNA ends. In PCR Primer (C. W. Dieffenbach and G. S. Dveksler, Eds.). Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY. pp. 381-409.

Frohman, M. A., Dush, M. K., and Martin, G. R. (1988). Rapid production of full-length cDNAs from rare transcripts: Amplification using a single gene-specific oligonucleotide primer. Proc. Natl. Acad. Sci. 85, 8998.

Gubler, U., and Hoffman, B. J. (1983). A simple and very efficient method for generating cDNA libraries. Gene 25, 263.

Gyllensten, U. B., and Erlich, H. A. (1988). Generation of single-stranded DNA by the * 266 .

19 转录 聚合 反应

polymerase chain reaction and its application to direct sequencing of the HLA-DQA

locus. Proc. Natl. Acad. Sci. 85, 7652. Henke, W., Herdel, K., Jung, K., Schnorr, D., and Loening, S. A. (1997). Betaine improves

PCR amplification of GC-rich DNA sequences. Nucleic Acids Res 25, 3957.

Innis, M. A., Gelfand, D. H., and Sninsky, J. J. (1999). “PCR Applications: Protocols For Functional Genomics.” Academic Press, San Diego, CA.

Kawasaki, E. S. (1990). Amplification of RNA. Jn “PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications” (M. A. Innis, D. H. Gelfand, J. J. Sninsky, and T. J. White, Eds.). Academic Press, San Diego, CA. pp. 21-27.

Loh, E. L., Elliott, J. F, Cwirla, S., Lanier, L. L., and Davis, M. M. (1989). Polymerase chain reaction with single sided specificity: Analysis of T cell receptor delta chain. Science 243, 217.

Maruyama, K., and Sugano, S. (1994). Oligo-capping: A simple method to replace the cap structure of eukaryotic mRNAs with oligoribonucleotides. Gene 138, 171.

McPherson, M. J., and Hames, B. D. (Eds.). (1995). “PCR 2: A Practical Approach”. IRL Press at Oxford University Press, Inc., Oxford, England.

Mullis, K. B., and Faloona, F. A. (1987). Specific synthesis of DNA in vitro via a poly- merase-catalyzed chain reaction. Methods Enzymol. 155, 335.

Mullis, K. B., Faloona, F. A., Scharf, S., Saiki, R., Horn, G., and Erlich, H. (1986). Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: The polymerase chain reaction. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 51, 263.

Ochman, H., Gerber, A. S., and Hartl, D. L. (1988). Genetic applications of an inverse polymerase chain reaction. Genetics 120, 621.

Olive, D. M., Simsek, M., and Al-Mufti, S. (1989). Polymerase chain reaction assay for detection of human cytomegalovirus. J. Clin. Microbiol. 27, 1238.

Paabo, S., Gifford, J. A., and Wilson, A. C. (1988). Mitochondrial DNA sequences from a 7000-year old brain. Nucleic Acids Res. 16, 9775.

Rees, W. A., Yager, T. D., Korte, J., and Von Hippel, H. (1993). Betaine can eliminate the base pair composition dependence of DNA melting. Biochemistry 32, 137.

Saiki, R. K., Scharf, S., Faloona, F., Mullis, K. B., Horn, G. T., Erlich, H. A., and Arnheim, N. (1985). Enzymatic amplification of B-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science 230, 1350.

Sarkar, G., Kapelner, S., and Sommer, S. S. (1990). Formamide can dramatically improve the specificity of PCR. Nucleic Acids Res. 18, 7465.

Sellner, L. N., and Turbett, G. R. (1998). Comparison of three RT-PCR methods. BioTechniques 25, 230.

Shaefer, B. (1995). Revolution in rapid amplification of cDNA ends: New strategies for polymerase chain reaction cloning of full-length cDNA ends. Anal. Biochem. 227, 255.

Shuman, S. (1994). Novel approach to molecular cloning and polynucleotide synthesis using vaccinia DNA topoisomerase. J. Biol. Chem. 269, 32678.

Triglia, T., Peterson, M. G., and Kemp, D. J. (1988). A procedure to in vitro amplification of DNA segments that lie outside the boundaries of known sequences. Nucleic Acids

Res. 16, 8186. Veres, G., Gibbs, R. A., Scherer, S. E., and Caskey, C. T. (1987). The molecular basis of the

sparse fur mouse mutation. Science 237, 415.

Vogelstein, B., and Gillespie, D. (1979). Preparative and analytical purification of DNA from agarose. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 76, 615.

Winship, P. R. (1989). An improved method for directly sequencing PCR amplified mate- rial using dimethyl sulphoxide. Nucleic Acids Res. 17, 1266.

(FE; SHER) * 267 -

S208 ESB PCR RIL

20.1 基本 原理

作为 广泛 使 技术 ,PCRe@ 诞生 便 生物 技术 领域 ,PCR 引物 催化 作用 特定 基因 DNA cDNA 序列 进行 重复 进行 样品 变性 退 引物 延伸 25 30 循环 导致 数量 指数 倍增 建议 那些 熟悉 基于 RNA PCR 读者 完整 19 阅读

克隆 目的 间接 测定 转录 史上 合成 cDNA 困难 : @ 生成 接近 具有 代表 CDNA ; @ 转录 效率 困难 直接 : CRNA 模板 质量 ; QRNA 模板 数量 ;GDcDNA 合成 方法 HE (FES 18 详细 讨论 )

PCR 技术 提供 伦比 优势 传统 克隆 方法 RNA 纯度 完整 较为 严格 PCR RNA 样品 纯度 比较 。PCR 优势 因为 PCR 引物 模板 进行 传统 cDNA 合成 Northern PCR 降解 RNA 具有 定量 RNA 样品 整体 效率 仍然 PCR 关键 参数

PCR 技术 转录 测定 实验 灵敏 非常 创新 极限 方法 报道 改进 达到 绝对 定量 造成 错误 微小 绝对 精确 挫败 变数

20.2 R&B 36 tH. 罗列 RNA 方法 具体 实验 整体 明确 方法 相对 常用 描述 实验 样品 RNA 含义 样本 (或 基线 ) 赋予 数值 1 0, 样品 通过 比较 获得 数值 注意 相对 测定 方法 相对 灵敏 直接 相关 相同 实验 样品 测定 方法 往往

@ PCR 技术 现在 Roche Molecular Systems, Inc. 455 F. Hoffmann-LaRoche Ltd. 拥有 专利 专利 授权 使 。PCR 必须 使 授权 循环 进行 Applied Biosystems 专利 许可 主管 ,850

Lincoln Centre Drive,Foster City,CA 94404 KFA.

° 268 -

20 定量 PCR 技术

巨大 差别 结果 常用 转录 测定 方法 相对 灵敏 RNA 灵敏 指标 CRNA sensi- tivity index) 实验 按照 它们 灵敏 简要 指标 综合 : 技术 难度 重复 目前 达到 灵敏 排名 转录 定量 标准 实验

实时 PCR Greal-time PCR) | 竞争 PCR(competitive PCR) PCR(semi-quantitative PCR) 实验 Cnuclear runoff assay) 核糖 核酸 保护 实验 (RNase protection assay)

Sl 核酸 保护 实验 (S1 nuclease protection assay) Northern (Northern analysis) 斑点 印迹 (dot blot analysis)

讨论 明了, 并非 灵敏 指标 排名 实验 方法 提供 信息 事实 转录 Northern 提供 编码 合成 mRNA 结果 灵敏 指标 排名 方法

20.3 定量

定量 方法 转录 进行 定量 确认 基因 拷贝 讨论 转录 进行 定量 方法 样品 样品 cDNA 合成 效率 差异 RNA 定量 挑战 工作 事例 ,cDNA 合成 效率 差异 样品 残留 乙醇 生物 材料 RNA 残留 苯酚 造成 试图 利用 (RT-PCR) 测定 转录 PCR 产物 数量 依赖 CRT) 效率 PCR 选择 效率 技术 相关 步骤 效率 综合 效应 定量 方法 必须 相对 效率 计算 “灵敏 指标 ”也 广泛 认为 灵敏 定量 技术 竞争 PCR 实时 PCR。 独立 实验 结合 转录 进行 精确 定量

实验 进行 标准 比较 样本 操作 研究 RT 反应 产物 cDNA 样品 进行 标准 反应 输入 ), : ORR MRE CDNA Hi: ORF Azio ; 基于 〈cpm) 同位 cDNA 少量 同位 方法 研究 生化 较为 合理 精确 认识 现在 标准 操作 测量 序列 参照 序列 研究 目标 序列 反应 行为 实验 增加 cDNA 合成 反应 效率 范围 10% 90%%

PCR 指数 增长 模板 程度 方程 描述 :

¢ 269

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

N=No(1+ef f)” hep ND EE No 模板 ; e 反应 效率 ; -一 完成 循环

特别 注意 数学 模型 估计 反应 PCR 潜力 完成 循环 使 进行 “变性 退火 延伸 循环 效率 改变 条件 实验 ,PCR 实验 模板 模板 产生 同样 影响

20.4 参照

技术 稳定 研究 结果 差异 实验 技术 数据 科学 研究 层次 误差 造成 潜在 问题 方面 方法 测定 参照 基因 基因 标准 表达 基因 表达 基础 细胞 代谢 相关 指导 思想 确认 那些 基因 表达 改变 实验 调控 程度

利用 基因 转录 样品 进行 标准 ; 检测 目的 基因 同一 同一 样品 系列 基因 重申 技术 ,Northern 灵敏 低下 问题 达到 选用 核酸 保护 实验 (第 16 ) RT-PCR 基础 方法 (第 19 ) 方法 基因 必要 PCR 进行 精确 定量 RNA 样品 数量 模板 )。 注意 特定 目标 转录 进行 精确 定量 细胞 整体 转录 状态 没有 帮助

研究 知道 存在 适用 任何 系统 “《 ) 基因 生物 事实 使 作对 基因 细胞 表达 差别 恶性 疾病 相关 RNA 测试 尤为 明显 自然 规律 参照 适用 代价 单个 模型 系统 确认 1 2 参照 保证 结果 精确 明智 测定 选用 参照 基因 问题 PCR 显示 实验 刺激 认为 稳定 序列 转录 改变 需要 它们 适合 .

基因 报道 常见 参照 基因 结果 遗漏 确实 突出 那些 考虑 作对 基因 基因 转录 合适 参照 转录 完全 取决 研究 研究 系统 生化 状况 没有 基因 任何 维持 改变 实验 表达 差异 作为 参照 选择

© B- 蛋白 〈B-actin) 表达 转录 ;几乎 细胞 (Kinoshita, 1992), B-actin 历史 参照 使 报道 反复 明了 p-actin 若干 刺激 细胞

表达 改变 《Leof F, 1986; de Leeuw ,1989; Dodge %&, 1990; Solomon , 1991; + 270 -

$208 定量 PCR 技术

Spanakis, 1993).

@ 甘油 -3- «Cglyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, GAPDH), '?& 关键 。GAPDH 转录 广泛 fp-actin 情况 ,GAPDH 表达 若干 实验 改变 (Alexander ,1990; Mansur 1993; Bhatia #, 1994; Lau ,2000)

@ 蛋白 (cyclophilin) 参与 蛋白 基因 保守 RNA 细胞 表达 A 通常 作对 mRNA 表达 差异 (Danielson ,1988; Haendler Hofer, 1995; Feroze-Merzoug ,2002)

AGA (histones) 体形 必需 转录 丰富 作为 基因 检测 «(Farrell Greene, 1993; Robert ,2002)

© - 磷酸 核糖 (hypoxanthine-guanosine phosphoribosyl transfer- ase,HPRT HGPRT), 细胞 回收 利用 闻名 。HPRT 〈Pernas-Alonso ,1999) HPRT 波动 增殖 细胞 表达 (Steen ,1990)

© 叶酸 (dihydrofolate reductase, DHFR) 合成 甘氨酸 同样 表达 细胞 生长 必需 。DHFR 作为 基因 基因 广泛 引用 (Linton ,1989; Horikoshi 4, 1992; Oleary ,1994; Balajee ,1999)

@ 26S 蛋白酶 (26S proteosome) 蛋白 [ -蛋白酶 〈ubiquitin-proteosome pathway)]。 26S 蛋白 设计 引物 转录 测定 实验 作对 (Bassett ,2004; 综述 Voges 1999).

@ 基因 粘连 蛋白 〈fibronectin, 转录 细胞 基质 )、 FERRE ASK (transferrin receptor, )、 “〈ubiquitin, 蛋白 蛋白 蛋白 降解 )、 蛋白 〈lamin)、 蛋白 (tubulin, BRK ) Cporphobilinogen deaminase, PBGD; 细胞 铁血 生物 合成 ;Chretien ,1988) mRNA 广泛 作对 蛋白 细胞 特定 功能 表达 mRNA 波动 进行 检测

@ 28S rRNA 18S rRNA 核糖 基因 转录 调节 产物 转录 产物 恒定 常用 (de Leeuw ,1989; Bonini Hofmann, 1991), # 转录 重要 认为 28S rRNA 18S rRNA 它们 基因 表达 恰当 28S rRNA 18S rRNA RNA 聚合 产物 ;而 mRNA 剪接 hnRNA RNA 聚合 RNA 聚合 生物 敏感 实验 操作 完全 fil RNA 聚合 转录 活力 ,RNA 聚合 [和 RNA 聚合 活力 丝毫

@ 线粒体 16S rRNA, 线粒体 细胞 16S rRNA 参照 rRNA mRNA, @@ 问题 报道 操作 线粒体 编码 基因 表达 造成 影响 那些 定位 细胞

* 271 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

rRNA 基因 (Tepper ,1992)

@ tRNA 包含 翻译 负责 氨基 转运 核糖 转录 tRNA 特异 检测 tRNA 。tRNA RNA 聚合 适合 作为 作为 基因 表达 @

20.5 参照

确定 基因 表达 差异 必要 置疑 数量 转录 RNA 样品 精确 测定 样品 真实 转录 帮助 体外 转录 (Krieg Melton,1987) 磷酸 (ribulose biphosphate carboxyl- ase; Smith ,2003) 那样 购买 获得 例子 研究 计划 选用 参照 模板 研究 目标 转录 相干 动物 RNA BA 转录 特别 策略 光合 途径 相关 磷酸 动物 系统 完全 存在 裂解 缓冲 直接 1 5ng 磷酸 mRNA 动物 目标 mRNA 纯化 整个 转录 完全 暴露 同样 环境 物理 操作

目标 转录 相关 转录 目标 转录 : 目标 转录 引物 /或 识别 拥有 转录 相似 动力 稳定 ; @ 电泳 表现 独立 目标 转录 充分 目标 转录 相似 转录 模板 “仿制 ”, 它们 模拟 真实 模板 特性 同样 沿 逻辑 RNA 样本 随后 RT-PCR 蛋白 mRNA,, 非常 ) 转录 样本 转录 同样 效率 进行 PCR 样品 蛋白 mRNA 异性 PCR 产物 数量 作为 标准 基础 作为 比较 转录 效率 指标 操作 通常 求实 数据 重复 鉴别 数据 变异 原因 标志 样品 不同 数量 参照 建立 标准 曲线 比较 标准 实验 质量 观察 实验 强度 测定 实验 数据

1989 ,Wang 首次 提出 使 转录 作为 实验 转录 进行 PCR 描述 载体 pPAW108 (由 American Type Culture Collection, Manas- sas, VA 提供 ) 包含 12 基因 序列 55 3 引物 识别 基因 序列 串联 T7 RNA 聚合 启动 5 编码 poly (A) 尾巴 序列 生产 互补 RNA (cRNA) 基础 合成 cRNA 7 ) 纯化 进行 定量 8 ), 精确 实验 RNA 那么 cRNA cRNA 目标 RNA 同样 物理 环境 基因 目标 转录 同样 PCR 效率 差异 @

@ 利用 标准 CRNA 提高 Northern 定量 范围 〈《Wang se 272 «

» 1993),

20 定量 PCR 技术

特别 注意 CRNA “正义 ”的 行为 mRNA 基本 mRNA 互补 转录 mRNA 结合 力学 极为 稳定 核酸 保护 实验 具有 价值 章节 定量 情况 cRNA 体外 转录 产生 正义 形式 正义 cRNA 才能 CDNA 合成 PCR mRNA 竞争 使 cRNA 产物 明确 mRNA 产物 体外 构建 增加 虽然 非常 相似 电泳 它们 构建 限制 虽然 模板 实验 目标 PCR 产物 进行 它们 模板 使 相同 引物 ;和 标准 曲线 比较 含量 操作 克服 “试管 效应 ”。

必须 注意 实验 样品 制备 测定 标准 CRNA 相当 麻烦 需要 测定 转录 真实 数量 拷贝 方法 论述 实时 PCR, 相对

20.6 对照 规划

目标 转录 引物 若干 方式 遗漏 历史 变化 评价

© RFS RRA cDNA 反应 早期 使 PCR 转录 进行 定量 操作 严重 问题

a 力学 引物 差别 导致 效率

b. 基因 目标 基因 mRNA 相近 方式 定量 意义

c. 基因 mRNA 细胞 周期 进程 往往 稳定

d. mRNA 目标 mRNA 必须 指数 检测

e. 目标 样品 反应 反应 引入 反应 差别

@ 同一 反应 (Murphy ,1990; Gaudette Crain,1991) “多 ”PCR, 简称 “多 技术 (multiplexing)”。 方法 改进 原因 导致 显著 误差

a 动力 差别 导致 效率

b. 基因 目标 基因 mRNA 相近 方式 定量 意义

c. 基因 mRNA 细胞 周期 进程 往往 稳定

d. mRNA 目标 mRNA 必须 指数 检测

反应 !

G@) 竞争 PCR, 同一 识别 参照 目标 CDNA 竞争 模板 竞争 同样 引物 (Becker-André Hahlbrock, 1989; Becker-André, 1991; Gilliand ,1990; Li ,1991) 反应 方法 定量 黄金 现在 实时 PCR 取代

273

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

#4 PCR 方法 方法 制备 转录 〈cRNA), 精确 定量 实验 目标 RNA W (Wang %, 1989; Ikonen ,1992; Vanden Heuvel #, 1993). HF H#G 转录 获得 实验 目标 RNA 物理 环境 ; 数量 精确 建立 标准 曲线 进行 比较 20. 1), 通过 测定 转录 CDNA 确定 进行 程度 转录 RNA 传统 DNA 模板 合适 转录 启动 连接 20.2); 转录 DNA 序列 5 噬菌体 RNA 聚合 启动 序列 20. 3) 构建 转录 模板 PCR 进行 制备 〈Vanden Heuvel ,1993) 设计 方法 记得 表达 转录 删除 序列 增加 片段。 因此, 因为 目标 转录 共享 PCR 引物 识别 序列 竞争 具有 同样 PCR 效率 汪汪 生生 凭借

cDNA

RNA/ng

50 cpm 500cpm 3000 cpm 50000 cpm

BAM BUTE 20.1 利用 标准 曲线 转录 操作 原始 描述 (Wang $F, 1989) , FA? P 标记 引物 进行 PCR。 Cerenkov 计数 计算 表示 样品 RNA WME. AR 反应 RNA 数量 同位 相等 转录 结果 表示 生物 lng RK lug RNA 目标 转录 ( CRNA 计算 )

20.2 体外 转录 模板 构建 转录 启动 T7、SP6 T3 (可 ) 附近 插入 模板 DNA, 合成 统一 RNA (载体 转录 线 )。 转录 实验 样品 确定 转录 PCR 效率 转录 核酸 使 细节 13 14 274 -

20 定量 PCR 技术

转录 RNA AAAAAA

20.3 PCR 合成 转录 模板 转录 制备 cRNA 序列 转录 模板 使 引物 5 T7 启动 引物 5 oligo(dT) 引物 oligo(dT) BAMA poly(A) 必需

poly (A) 支持 需要 策略 杂交 合成 CRNA

竞争 PCR 方法 构建 引物 识别 序列 相同 模板 5 ) 特异 3 竞争 DNA 特异 引物 PCR 引物 识别 序列 添加 竞争 DNA 末端 20. 4) 方法 构建 模板 DNA 相应 CDNA 使 同一 进行 PCR 产物 300bp 竞争 序列 测定 基因 特异 cDNA 模板 增加 PCR 效率 造成 影响 相应 增加 定量 cDNA RNA,, 实验 重要 重要

5 5 引物 \

3 引物 PCR | 5 5 3 5 3 引物 | 基因 特异 引物 II II IT

纯化 ; 计算 | Al HET ie SH

iy

20.4 DNA 模板 构建 引物 含有 5 基因 特异 基因 特异 序列 PCR 竞争 模板 添加 方法 利用 PCR 产物 末端 添加 限制 序列 竞争 PCR 使 覆盖 基因 特异 序列 引物 同时 竞争 模板 目标 cDNA。 它们 程度 反应 管内 它们 摩尔 函数

® 实时 PCR。 详细 讨论 实时 PCR 非常 灵敏 动力 广 范围 转录 相当 准确 荧光 定量 方法 cRNA 模板 修改 275

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

实时 PCR 实验 实验 事例 Fronhoffs 报道 (2002).

20.7 关于

重要 足以 控制 反应 效率 比拟 反应 设计 确保 观测 PCR 产物 真实 因为 KARP MF (amplicon) 污染 造成 许多 实验 使 便携 PCR 工作 微型 桌面 生物 安全 工作 通过 HEPA@ 建立 环境 紫外 游离 功能 工作 具有 同位 实验 保护 2P 辐射

重要 PCR 反应 CRT) 必须 反应 cDNA 合成 (RNA、 ), 合成 EDNA, RT- 反应 任何 产物 基因 DNA 污染 结果 习惯 RNA 样品 RNase ff) DNase | 进行 RT-PCR 除去 DNA 模板 技术 诞生 存在 标准 操作

提议 ,RT-PCR 操作 简化 样品 DNase TI 产生 构思 因为 DNase 降解 mRNA : cDNA 杂交 基因 DNA CDNA 降解 (Flohr ,2003) ,MMLV 37C F 反应 50min FM cDNA ,50C 15min 使 超过 温度 温度 mRNA : cDNA 杂交 放出 核酸 降解 cDNA (暂时 ) 。37C cDNA : mRNA 杂交 10U DNase I (Rift 2h, 使 标准 技术 彻底 清除 DNase I DNase 切割 DNA : RNA DNA, 活力 DNA 降解 操作 适合 选用

20.8 竞争 PCR 关键 因素

56H PCR 模板 反应 竞争 进行 PCR FB HK (Diviacco ,1992; Siebert Larrick,1992,1993) 目标 CDNA 竞争 模板 拥有 相同 引物 识别 序列 竞争 模板 讨论 CRNA, CDNA,

“或 ) 模板 特定 反应 它们 摩尔 函数 存在 模板 损害 模板 利益 情况 产生 推论 摩尔 它们 相同 效率 定量 技术 测定 样品 含量 CDNA, 稀释 竞争 模板 直到 找到 摩尔 那个 CDNA 含量 20. 5) 简单 直接 方便 读者 RT- PCR 竞争 PCR 优点 缺点 20. 1 20. 2 逐一 进行 比较

@ HEPA 滤器 :高 空气 粒子 滤器 > 276 -

20 定量 PCR 技术

RNA | 转录 cDNA

- VEOUUG

cDNA 50ng 50ng SOng S0ng 50ng 50ng 竞争 模板 ”100amol 10amol lamol 0.lamol 0.0lamol 0.001amol

电泳 ha.

2 3 4 5 6 标准

竞争 模板

基因 特异 PCR

20.5 使 竞争 PCR 转录 定量 合理 设计 CDNA 竞争 模板 电泳 表现 独立 反应 CDNA 竞争 模板 使 引物 物理 参数 相同 目测 数字 强度 相等 反应 数量 相等 反应 TOD, / IOD 模板 1. 0 相关 竞争 模板 质量 快速 测定 同一 反应 管内 试验 模板 1. 0 快速 获得 反应 管内 竞争 模板

20.1 标准 RT-PCR 定量 优点 缺点

优点

设计 简单

反应 快速

反应

检测 mRNA

细胞

© poly(A) > iii ie BE AS Zi th AS HE FE

平台 效应 问题 反应 /和 解决

实验 避免 杂交 难点

数据 重复 缺点 造成 样本 主要 因素 PCR 指数 ,定量 比较 困难 使 参照 转录 解决 平台 问题 © 微小 差别 导致 产物 输出 巨大 差别 反应 污染 敏感 ,尤其 基因 DNA 污染 数据 重复 问题

20.2 ”竞争 PCR 优点 缺点

竞争 模板 实验 目标 模板

体外 转录 制备 CRNA 转录 指标 反应 竞争 模板 cDNA 造成 影响 物理 参数

PCR 平台 效应 竞争 模板 cDNA 影响 相同

通过 产物 比例 进行 定量 ,因此 需要 限制 PCR 指数 数据 重复

产物 电泳 轻易

SYBR

使 同位

ae “9

27

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

正确 确认 目标 模板 竞争 模板 比例 ,需要 若干 稀释 梯度

必需 耗费

目标 模板 需要 制备 竞争 模板

构建 竞争 模板 必须 合成 引物

使 DNA 竞争 模板 显示 反应 效率

竞争 模板 作为 定量 工具 ,必须 确认 模板 效率 目标 模板 相等 PCR 操作 费时 费力

设计 竞争 PCR 需要 重点 考虑 问题

(1) 必须 知道 竞争 模板

、PCR RT-PCR 方法 合成 模板 必须 纯化 浓度 进行 定量 方法 紫外 吸收 8 ), 数字 “〈 11 ) 需要 合成 1 3wg 竞争 模板 反应 那样 达到 精确 须知 模板 确切 摩尔 (umol) 表示 合成 竞争 模板 浓度 使 RNA 竞争 转录 100ng 细胞 RNA PBA th RE 1 10000fg 竞争 RNA。 模板 稀释 浓度 摩尔 〈amol) @ 储备 确切 表示 它们 定量 目的 保证 样本 同时 竞争 模板 目标 模板 竞争 模板 数量 产物 相同

20.3 单位

10° 摩尔 6. 02 X 1023

10-3 6. 02 X 107 p> PORE AR 10~§ AE AK 6. 02X10!” n* 摩尔 10-? 6. 02X10" p,, 摩尔 10-12 6. 02X101 f, 摩尔 10-15 6. 02 X 108

10-18 6. 02X 105

10~ 2! RE AR 6. 02 X 10? 通常 PCR 竞争 模板 储备 工作 浓度 偏爱 amol 表示 模板 浓度 Lamol PCR 产物 600000 《2) 模板 目标 模板 必须 选用 引物 必须 同时 识别 竞争 模板 目标 模板 同样 效率 达到 DNA 末端 添加 引物 互补 序列 构建 竞争 模板 模板 目标 模板 尽量 实验 结束 才能 准确 比较 争辩 差异 序列 序列 优先 缘故 常用 引物 cDNA 创建 缺失 构建 非常 竞争 模板 制备 竞争 模板 目标 模板 电泳 容易 场合 容易 @ 进行 浓度 操作 研究 考虑 20. 3 涉及 单位 - 278 .

20 定量 PCR 技术

模板 序列 使 竞争 模板 研究 实验 cDNA 序列 ) 进行 竞争 PCR 实验 需要

a. 竞争 模板 序列

b. 竞争 模板 含有 正常 〈G C) 含量

c. 竞争 模板 没有 AT GC

d. 竞争 模板 实验 cDNA KEE) + 200bp.

(3) 目标 模板 竞争 模板 必须 相同

RNA PCR 实验 相关 数据 转录 PCR 效率 影响 模板 竞争 模板 PCR 效率 问题 : 凡是 cDNA 影响 因素 存在 竞争 模板 转录 竞争 模板 cDNA 没有 cDNA 合成 常见 问题 体外 生成 转录 fill AY RNA 样品 线 线 转录 使 引物 识别 poly(A) ALLAH oligo(dT) 识别

(4) 必须 尽量 减少 形成

FORE PCR 产物 竞争 模板 目标 cDNA 重组 ) 竞争 模板 野生 cDNA 缺失 插入 形式 形成 特别 普遍 容易 确认 目标 cDNA 竞争 模板 比较 。PCR 循环 RRS, HORA MRA AERA. FER AY PCR 循环 形成 特别 变性 (Ruano Kidd, 1992; Jensen Straus,1993) 形成 影响 PCR 精确 定量 PCR 循环 减少 形成 降低 它们 麻烦 严重

(5) 检测 方法 必须 优化 @

竞争 PCR 优点 必用 同位 标记 产物 常规 操作 PCR 循环 25 30 顺利 合成 产物 简单 ,SYBR 绿 (Schneeberger ,1995) SYBR 直接 目测 记录 (pho- todocumenting) 数码 摄像 它们 背景 明显 增强 灵敏 。DiCesare (DiCesare ,1993; Wages ,1993; Wilkinson}, 1995; Blok ,1997) 描述 电化 关联 竞争 PCR。 尽量 减少 形成 减少 PCR 循环 检测 问题 SYBR 染色 清晰 含量 足以 染色 情况 推荐 使 使 染料 通常 产生 背景 降低 PCR 定量 准确 PCR 循环 产物 积累 检测 实时 PCR 实验 检测 进行

PCR 极其 灵敏 模板 定量 方法 PCR 基础 实验 Northern 核酸 保护 实验 数据 缺乏 灵敏 竞争 PCR 优化 反应 灵敏 使 模拟 目标 模板 需要 测定 PCR on cDNA 没有 进入 竞争 模板 进入 方法 缺点 些小 麻烦 ) : 样品 需要 连续 稀释 竞争 模板 标定 ; @

@ 竞争 PCR 实时 PCR 需要 同位 279

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

引物 引物 合成 竞争 模板 基因 特异 引物 竞争 PCR

20.9 竞争 PCR 主要

(1) 制备 PCR 竞争 模板 @ 竞争 模板 基因 特异 引物 ) 引物 进行 PCR 基因 特异 引物 进行 试用 25 30 基因 特异 引物 ,Tm BH 60C. 利于 cDNA 忠实 Mie 仆仆 (第 19 ) 竞争 模板 通常 200 700bp。 竞争 模板 模板 ) 200bp。 竞争 产物 ;确定 浓度 标准 比较 th @Xx174/ Hoe ; 8 )。 使 滴定 储备 BEE WEEE <A Q) 体外 转录 制备 竞争 模板 靠近 噬菌体 RNA 聚合 启动 (如 T7、SP6 T3) 连接 插入 cDNA. 体外 转录 转录 80C 使 取出 (2) 质量 RNA 使 RNase 技术 细胞 使 适合 方法 优先 使 - -苯酚 纯化 Nase DNase 样品 DEPC 配制 70% 乙醇, 洗涤 RNA 沉淀 离子 定量 dNTP 影响 PCR). 合适 方式 储存 纯化 RNA (一 80C ) 液态 缓冲 保存 80YC (3) @mM cDNA 选用 Nase H™ 合成 纯化 cDNA。 —20°CEKRF cDNA 取出 使 Mn? > 依赖 (4) 进行 初级 竞争 PCR (A 20. 6) 竞争 模板 10 稀释 © IN Hh PEM BE RY PCR 竞争 模板 cDNA 反应 © PCR 增产 © 测定 接近 目标 cDNA 竞争 模板 浓度 精确 通常 目测 。280 -

$208 定量 PCR 技术

20.6” 10 稀释 梯度 # 蛋白 cDNA 竞争 模板 制备 竞争 模板 〈540bp) 方法 合成 引物 蛋白 (365bp) cDNA 使 oligo(dT) AMV 。PCR 25 循环 6 样品 标准 (Sigma) 2. 5 琼脂 1XTAE 配制 ) 电泳

电泳 琼脂 1 X TAE 缓冲 SYBR 溶液 染色 宝丽来 667 底片 摄影 。10 梯度 稀释 系列 反映 样品 基本 特征 估计 样品 蛋白 cDNA 含量 样本 竞争 模板 含量 : 1,10. 0amol; 2,1. 0amol; 3、0. lamol; 4,0. 01amol; 5,0. 00lamol;

6,0. 0001amol。 符合 lODe gs /IODs sag =1.0 2

(5) 进行 竞争 PCRPM (A 20.7)

20.7 进一步 定量 2 竞争 模板 反应 方法 20. 6 描述 结果 显示 接近 目标 cDNA 竞争 模板 浓度 1. 0amol。 因此 10amol 开始 2 稀释 : 1,10amol; 2,5amol; 3, 2.5amol; 4,1. 25amol; 5,0. 625amol; 6,0. 3125amol。 符合

2, 含有 B 蛋白 cDNA KAA Samol 接近 120000

储备 配制 系列 2 稀释 竞争 模板 浓度 浓度 10 稀释 浓度 接近 目标 cDNA 初级 浓度

2 稀释 PCR 竞争 模板 CDNA 反应

PCR 增产

测定 接近 目标 cDNA 竞争 模板 浓度 精确 通常 目测

预期 检测 基因 表达 ) 2 改变 2

20.10 $2474: 竞争 PCR

BER HE AE Ra FEA S| etl AE Te WR SE HR. I Ba BA cDNA 竞争 PCR 使 体外 转录 目标 RNA RNA 同一 反应 转录 反应

281 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

20.10.1 竞争 模板 合成

PCR 竞争 模板 使 合成 引物 反应 管内 制备 合成 模板 PCR 程序 循环

ORF. 10 PCR 缓冲 Syl 25mmol/L MgCl, 3yl 10mmol/L dNTP lyl 竞争 模板 Xl EWE AA Ing) 10pmol/L 5 合成 引物 | 10pmol/L 3' 引物 Dl (36.5—X) pl Taq 聚合 0. Spl

@ 反应 覆盖 矿物 使 步骤 矿物 离心 短暂 离心 样品 @ 进行 PCR 循环

94°C 3min

94°C 1min ma 循环 126 lmin

延伸 72 10min

保存 4C

注意 1 引物 退火 温度

注意 2 ”由 合成 引物 5 悬垂 需要 退火 温度 Ta 引物 退火

@ 1: 500 @ PCR 产物 稀释 PCR 产物 作为

OKRA.

10 PCR 缓冲 Syl 25mmol/L MgCl, 3yl 10mmol/L dNTP lpl HOA th 2. Syl 10umol/L 5'cDNA 引物 2ul 10umol/L 3’cDNA 引物 2ul KK vi 7k 34yl Taq 聚合 0. Syl

——— a KR SU a LULU @ 反应 覆盖 矿物 矿物 离心 短暂 离心 样品 @ 进行 PCR 循环 < 262

20 定量 PCR 技术

94°C 3min

94°C lmin xe ye 循环 (Pn lmin

延伸 12 10min

停放 4°C

HB 1 引物 退火 温度

注意 2 如果 20 循环 产物 5 MAK.

@ 产物 稀释 电泳 拍照

© @@ PCR 产物 竞争 DNA 模板 纯化 方法 使 快速 清除 试剂 PCR Pure Kit (Roche),

@ Axeo 模板 浓度 产量 11 )。 20 保存 竞争 模板

QD 模板 使 100amol/ pl 竞争 模板 储存 10pg/ml 必要 使 PCR AY TE Bey (10mmol/L Tris, pH7.5; 0. 1lmmol/L EDTA). 稀释 竞争 模板 溶液 立即 使 完毕 剩余

20. 10.2 cDNA 合成 @ 确保 足以 合成 CDNA 质量 RNA。 电泳 28S

RNA 18S RNA, 18S RNA 5 6 纯化 选择 ® 制备 cDNA 混合

[ 浓度 ] DEPC 3yl = 25mmol/L MgCl> 4ul 5mmol/L 10X mh @ oe 1x 10mmol/L dNTP 2ul lmmol/L oligo(dT) @ 2ul 2. 5umol/L RNasin 1yl 2.5U/pl 混合

@ 微型 离心 500ng RNA (2yl; 250ng/pl). 3p] RA RARMENI ZK. 65°C 2min,

© cDNA 混合 @ 制备 ) 转移 含有 变性 RNA 反应 管内

© 室温 3min 引物 退火

© 1ml 转录 ;轻柔 混合 使 混合 均匀

@ 42C 30~60min (AMV), BK 37°C{Ri 30 60min (MMLYV),

95°C IFA 5min 使 保存 操作

20. 10.3 ”竞争 PCR (初级 )

初级 目的 确认 目标 cDNA 近似 含量 反应 体系 原始 转录

© 10X :100mmol/L Tris,pH8. 3;500mmol/L KCI。 生物 制品 供应 商都 供应 合成 cDNA 整个 系统 @ 1lpg 随机 引物 代替 oligo(CdT) ,或 添加 随机 引物 olijgo(dT) 进行 CDNA 合成

- 283 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

HUAI] cDNA 巨大 差别 初级 初步 确认 接近 目标 cDNA 竞争 模板 稀释 进一步 2 稀释 竞争 模板 目标 模板 浓度 实验 改变 造成 mRNA 巨大 变化 需要 重新 进行 10 稀释 梯度 操作

D 需要 测定 样本 准备 13 反应 PCR 混合 〈12 反应 富余 ) ( 20. 4).

20.4 PCR 混合

PCR 混合 50 反应 6 反应 ( 7) 12 +2 he (X13)

10X PCR 缓冲 lmmol/L 35. Onl 65. Oul 25mmol/L MgCl, 1. 5mmol/L 21. Onl 39. Ol 241. 5yl 448. 5yl 10mmol/L dNTP 0. 2mmol/L “7. Opl 13. Oul 5'cDNA 4] 9 (20umol/L) 0. 4umol/L 7. Opl 13. Oul 3'cDNA 引物 (20pmol/L) 0. 4umol/L 7. Opl 13. Ol cDNA® 14. Opl 26. Onl Taq 4 BE? 2.5U/ 3. Syl 6. Spl (SU/pD war 体积 322. Onl 598. Ol

@ 启动 PCR Mt AERA WEAN A cDNA, @S/U a mT HE CE RU A REBT RIES. EAE AE 相当 竞争 PCR 系统 竞争 没有 @ 竞争 模板 cDNA.

© 稳定 使 启动 配方 Tad 聚合 结果

@ He 6 + PCR Bip Pi~Ps.

@ 制备 10 稀释 梯度 竞争 模板 TE 缓冲 (10mmol/L Tris, pH7. 5; 0. 1mmol/L EDTA) 配制 浓度 10wg/ml 6 Ol.

® 指定 竞争 模板 储存 〈100amol/m) P, 操作 10 梯度 稀释 竞争 模板

[ 浓度 ] 10amol/pl

P, ipl Pi ,混合 1. Oamol/pl Ps 1pl Po ,混合 107! amol/yl Py pl Ps ,混合 10~?amol/pl

Ipl Py ,混合 10~%amol/pl

1pl Ps ,混合 10~‘amol/pl

© 6 + PCR 标号

@ :

2pl 稀释 CP) Pe)

48pl PCR HIRAM? CHO)

50pl 体积

@ 短暂 离心 使 反应

@ 随机 引物 (lug) 代替 oligo(dT), 添加 随机 引物 oligo(dT) 协同 进行 CDNA 合成 * 284 -

20 定量 PCR 技术

进行 循环

94°C 3min

94°C cal KC [min >25 循环 Tae iar

延伸 Ge 5min

保存 4°C

注意 ”退火 温度 引物 决定

© 准备 2.5%% 琼脂 1XTBE 1XTAE 配制

OFT 10 反应 覆盖 矿物 ), 转移 反应 〈Kimwipe) 1. Onl 10x EF 缓冲

@ 标准 作为

注意 根据 需要 增加 降低

注意 2 常用 标准 Promega 公司 No.G3161: 1000bp、750bp、500bp、300bp、 150bp 50bp。

@ 电泳 ,用 1XTBE 1xTAE 配制 1XSYBR 绿 染色 紫外 线 注意 保护 眼睛 皮肤 ) 检查 电泳 拍照

® 确定 接近 目标 cDNA 竞争 模板 浓度 目测 足以 系列 10 稀释 梯度 判断 提供 精确 综合 〈integrated optical density,IOD) 比例

20. 10.4 竞争 PCR (次 )

竞争 模板 产物 目标 cDNA 接近 稀释 倍数 倍数 10 2 稀释 浓度 反应 2 稀释 梯度 目标 样本 基因 特异 CDNA 数量 测定 进行 微调 稳定 重复 考虑 使 初级 同样 体积 PCR 混合 混合 放置 ;如果 预先 准备 Tag 聚合 聚合 混合

® 6 + PCR Ftp_t Si~Se.

Q 制备 2 稀释 梯度 竞争 模板 6 Spl 浓度 1l0pg/ml LAA PCR TE 缓冲 (10mmol/L Tris, pH8.0; 0. 1mmol/L EDTA) 配制 ]。

@ 10 接近 目标 cDNA 竞争 模板 浓度 〈10z P.) Wem. FE 2 梯度 稀释 竞争 模板

fh FE Tr xX [ 浓度 ]

Si Spl P, 51077! amol/pl S2 Spl Si ,混合 2.5 X 107-1 amol/pl Ss Spl So ,混合 1. 25X107~!amol/pl Si Spl Ss ,混合 6.25X10z 2amol/pl Ss Spl Sa ,混合 3. 125 X 107-2 amol/pl 36 Spl Ss ,混合 1.56 X 107-2 amol/pl

° 285

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

® 6 PCR 标号

Os Pima:

2yl 稀释 (S Se )

481 PCR 混合 @ [ 20. 10. 3 竞争 PCR MARTH) BOF]

50pl 体积 © 短暂 离心 使 反应 @ 进行 94°C 3min 94°C lmin 2. @C- inh 循环 (Ge 2min 延伸 rz 5min 保存 4°C

ER 确保 使 参数 10 稀释 梯度 完全 使 退火 温度

@ 准备 2. 5%% 琼脂 ,用 1XTBE 1XTAE 缓冲 配制 选用 初级 同样 琼脂 电泳 参数

@ lol 反应 覆盖 矿物 ) 转移 反应 (Kimwipe) 1. Spl 10 ER 缓冲

电泳 标准 作为

@ 电泳 ,用 1XTBE 1XTAE 缓冲 配制 1XSYBR 绿 染色 《在 线 照射 注意 保护 眼睛 皮肤 ) 检查 电泳 拍照

确定 接近 目标 cDNA 竞争 模板 浓度 系列 样品 稀释 梯度 2 利用 软件 判断 接近 目标 cDNA 竞争 模板 浓度 IODga /IOD eg aie =1 £8 那个 样品

20.11 关于

结果 进行 竞争 PCR 依赖 效果 质量 正如 11 研究 错误 认为 昂贵 系统 弥补 质量 事实 精确 重复 开始 /或 直接 关系 ; 相当 程度 进行 优化 选择 重要 PCR 反应 优化 读者 11 数字 优化 相关 建议

竞争 PCR, EB 染色 获取 数据 容易 因为 EB 染色 导致 背景 染料 SYBR 绿 SYBR 显然 - 进行 目测 仿 数字 质量 精确 PCR 添加 放射 标记 dNTP, 放射 显影 计数 进行 测定 实验 需要 进行 放射 标记 放射 标记 副作用 推荐

@ -种 随机 引物 (lug) pL oligo(dT), 添加 随机 引物 oligo(dT) 协同 进行 cDNA 合成 > 286 -

20 定量 PCR 技术

20.12 竞争 PCR 问题 解答

PCR 反应 精确 浓度 非常 灵敏 定量 实验 精确 吸取 cDNA 合成 反应 PCR 配制 混合 关系 减少 程度 提高 重复 产量

(1) 变更 (Cnon-negotiables)

© 质量 RNA

RNase 技术

FA Git i OR AM a Hh Pe HT SS pe EH HK

酸性

© 缓冲 沉淀

RNase DNase

DEPC 配制 70%% 冲洗 RNA 沉淀 @。

妥善 储存 纯化 RNA。

@ cDNA 随后 PCR

cDNA 反应 使 RNA (200 500ng)

使 缺乏 RNase

避免 依赖 Min? >

保证 使 cDNA 反应 混合

保证 使 PCR 混合

(2) 常见 问题

© 优化 Mn2 浓度 递减 0. 1mmol/L 梯度 )

减少 循环

减少 反应

使 PCR,

@ 没有 产物

检查 RNA。

RNase 抑制 (4 RNasin)

检查 PCR 反应

检查 反应

检查 PCR 循环 参数

@ 产量 低下

检查 样品 裂解 完全

检查 RNA 沉淀 溶解 充分

测定 Azxso/Asxso 1.65 (说明 蛋白质 杂质 污染 )

© 阳离子 定量 dNTP 结合 cDNA 合成 PCR, * 287

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

检查 RNA 降解 状况

© 获得 没有 立刻 冷冻

RNA 储存 20"C 807C

© 溶剂 反应 RNase

DNA

DNase DNA 污染

确保 RT- DNA 污染

© 数据 重复

使 〈2001wl LHRH); 延长 循环 参数

考虑 使 PCR 19 )。

细胞 准备 反应 混合 反应

选用 Tan 接近

选用 PCR 设计 AccuTaq L. A. Sigma 产品 ) 混合 (如 Tac 校对 ) 协同 作用 产生 产物 忠实

考虑 使 PCR

同样 方法 没有 RNA。

使 同样 方法 没有 RNA.

同一 操作 没有 RNA.

检查 细胞 生长 状态 细胞 细胞 周期 重复

检查 反应 混合

确认 微量

优化 循环 进行 反应 同一 )

购买 预制 酰胺 预制 供应

(3) 常规 建议

© 变性 温度 (90~92°C),

降低 延伸 温度 68°C

循环 延长 延伸 (5 20s/ )

微量 技术 实验 重复 非常 重要 定时 微量

确保 样品 RNA PCR RNA (在 cDNA 合成 ) cDNA (在 PCR ) 极为 敏感 RT-PCR 反应 模板 通常 产量 副作用 PCR 反应 吸取 微量 表面 反应 管内 避免 表面 反应 造成 意外 影响

遵守 标准 方法 防止 引入 污染 滤芯 容积 (positive dis- placement micropipettors)

”学 使 硅烷 微型 离心 附录 8) CDNA PCR 产物 (pe) 《或 ), 反应 操作 损失 微量 模板 进行 稀释

。288 -

$208 定量 PCR 技术

20. 13 ”实时 PCR

现在 广为人知 实时 PCR (real-time PCR, RT-PCR) (Higuchi ,1992; Higuchi ,1993) 基因 转录 进行 定量 重大 突破 利用 荧光 技术 方法 PCR 累积 产物 进行 定量 需要 固定 循环 结束 电泳 产物 进行 鉴定 终点 实验 科学 文献 实时 PCR MLE “HM RT- PCR”。 RT-PCR 事实 直接 cDNA 合成 随后 根本 涉及 PCR 命名 常常 混乱 实时 PCR 描述 那样 进行 技术 读者 理解 问题

实时 PCR 需要 荧光 标记 试剂 荧光 激发 设备 循环 光纤 灵敏 冷却 电离 耦合 (charge-coupled device, CCD) 相机 控制 设备 电脑 根据 PCR 增长 推测 转录 ;, 因此, 这些 精确 定量 标准 曲线 相关 基因 GAPDH HPRT 比较 相对 满足 研究 需要 希望 确切 知道 mRNA 拷贝 CRNA 参照 实时 PCR 检测 cDNA 合成 CDNA 抑制 价值 方法 超常 灵敏 广泛 接受 甚至 检测 单个 细胞 (Smith ,2000) 单个 基因 单个 拷贝 (Wettwer ,1997)

实时 PCR 操作 检测 转录 方面 若干 传统 方法

@ 竞争 PCR 节省

G@ 快速

@) 广泛 定量 动力 范围 6 8 数量

© 自动

@ 反应 封闭 系统 降低 样品 污染 样品 操作 引入

© 没有 PCR 样品 操作

@ 附带 进行 精确 软件

常规 熔点 曲线 PCR 产物 引物

@ cDNA 进行 PCR 指数 判定 RNA 模板

初次 实时 PCR 操作 利用 CEB) WRIA. AW EBA VHA PCR 产物 产物 比例 结合 荧光 Cintercalator-based detec- tion)。 传统 PCR iA AB LEA See, (RA WPT RORY Re SPCR 特异 包含 非特 产物 EB 知道 ,EB 造成 荧光 问题 DNA ( PCR 产物 ) 结合 荧光 SYBR 绿 代替 EB, 问题 因此 改善 特异 产物 荧光 阳性 ) 依然 合成 产物 特异 非特 导致 荧光 信号 增加

解决 问题 改进 〈probe-based detection), ih 合法 方法 荧光 生成 5 -核酸 实验 (fluorogenic 5 -nuclease assay)®, iit Wp ic 4 It Ye BAY HE KA MRR ET (Lee ,1993;

@ 命名 16 核酸 保护 实验 289

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Livak ,1995) 使 模板 序列 5 3 引物 结合 5/ 标记 荧光 报告 6- (6-carboxyfluorescein, 6-FAM); 3" 临近 标记 荧光 6- - - (TAMRAI*” )。 单个 荧光 报告 空间 定位 接近 抑制 报告 F6rster 共振 (Forster resonance energy transfer), Forster 共振 〈flu- orescence resonance energy transfer), FRET (Frster,1946,1948) 设计 使 Tu。 温度 引物 温度 模板 退火 引物 相应 退火

5 引物 jae OH—® 5) 模板 基因 报告 基因 退火 3 引物 SEE © —Q » TTT SS SL TIPE HAIE), Tagre ae) 5 ~ 3 RIM IRS sii tui 降解 a a Se @ ce) A im -本 —-_§ RELA SHRBANGS, 检测 荧光

20.8 实时 PCR. (a) 含有 荧光 报告 (F) ARIE REA (Q) 荧光 模板 退火 保持 完整 附近 染料 〈b) PCR fe, Taq 聚合 5 3) 核酸 活性 造成 置换 切割 降解 (co) 染料 荧光 CREM RA) 实时 测量 PCR 产物 产生 直接 相关 ,PCR 引物 继续 延伸 通过 暴露 完整 产物

68~72C 引物 延伸 Taq 5 3 核酸 活性 切割 结合 荧光 报告 释放 荧光 影响 循环 激光 激发 射出 荧光 原先 结合 抑制 模板 取代 Taq) 5 3 聚合 活性 因此 通过 继续 合成 PCR 产物 《图 20.8)。 荧光 附近 释放 5 荧光 报告 -CCD 系统 检测 荧光 信号 实验 目前 广泛 TaqMan Xe, Wa, WABI HK 检测 释放 5 标记 3 P, 反应 结束 检测 指标 ;而 实时 PCR 若干 检测 通道 研究 进行 反应 若干 引物 反应 减少 生产 惊人 增长

关于 数据 PCR 计算 循环 (threshold cycle, Cr).

循环 样品 荧光 达到 10 基线 (或 指定 倍数 ) 循环 实时 PCR 产物 累积 模板 线性 关系 非常 重要 模板 容易 《〈 ) 检测 明显 荧光 增强 CA 20. 9) 果实 使 Roche 仪式 20. 10) Perkin-Elmer ABI PRISM7700HT 测序 检测 检测 荧光 信号 反应 样品 进行 任何 操作 随后 标准 曲线 20. 11) 比较

模板 精确 定量 . 显而易见 理由 PCR 系统 显得 特别 诱惑 定量 行为 基于 自动 操作 联系 连续 循环 收集 数据 立刻 操作 实验

力学 线性 范围 拓展 7 范围 - 290 -

进行 实验 反应 结束 打开

20 定量 PCR 技术

RT-PCR

循环 20.9 实时 PCR 循环 结束 测量 PCR 产物 循环 参数 循环 Cr 累积 SKE. eM (SERA DNA cDNA) HARD. Cr (AAI Applied Biosystems, Inc. K. J. Livak 博士 提供 )

20. 10” 循环 PCR 系统 Roche Applied Science 提供 )

减少 实验 若干 报告 荧光 标记 方法 缺点 购买 仪器 通常 需要 5 美元 合成 针对 目标 基因 荧光 标记 昂贵 强调 实时 PCR 同时 检测 若干 基因 基因 合适 选择 23 描述 芯片 技术 基因 差异 表达 确认 实时 PCR 确证 那些 推定 基因 调控

显然 PCR 广泛 潜在 病原 剪接 存档 样品 进行 室内 研究 实验 室内 使 世界 范围 合作 研究 基础 实验 必须 实验 操作 步骤 标准 确立 参照 RNA 进行 定量 主要 生物 技术 供应 商都 提供 细胞 RNA 转录 集合 7 ) 作为 参照 RNA。 批号 参照 RNA 规模 工业 相当 同一 批号

« 291

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

RT-PCR 曲线

R2=0.9968

oe fERR 20. 11 如果 需要 确定 绝对 数量 程度 ), 那么 常用 方法 制备 模板 梯度 稀释 测量 标准 曲线 果实 相对 ,那么 实时 PCR 目标 基因 累积 产物 基因 (如 GAPDH B 蛋白 ) 产物 直接 进行 比较 标准 曲线 基础 拷贝 循环 (Cr) ARB Applied Biosystems, Inc. K. J. Livak 博士 提供 )

RNA, 容易 同样 供应 提供 启动 配方 实时 PCR 混合 Cal Sigma 公司 Jump Start).

20.14 参考

Alexander, M., Denaro, M., Galli, R., Kahn, B., and Nasrin, N. (1990). Tissue-specific gene regulation of the glyceraldehyde-3-phosphate-dehydrogenase gene by insulin cor- relates with the induction of an insulin-sensitive transcription factor during differenti- ation of 3T3 adipocytes. Jn “Obesity: Toward a Molecular Approach” (G. Bray, D. Ricquier, and B. Spiegleman, Eds.), pp. 247-261. A. R. Liss, Inc., New York.

Balajee, A. S., May, A., and Bohr, V. A. (1999). DNA repairs of Pyrimidine dimers and 6- 4 photoproducts in the ribosomal DNA. Nucleic Acids Res. 27, 2511.

Bassett, C. L., Nickerson, M. L., Farrell, R. E., Jr., Artlip, T. S., Ghaouth, A. E., Wilson, C. E., and Wisniewski, M. E. (2005). Characterization of an S-locus receptor protein kinase-like gene from peach. Tree Physiology 25.

Becker-André, M. (1991). Quantitative evaluation of mRNA levels. Methods Mol. Cell. Biol. 2, 189.

Becker-André, M., and Hahlbrock, K. (1989). Absolute mRNA quantification using the polymerase chain reaction (PCR). A novel approach by a PCR aided transcription titration assay (PATTY). Nucleic Acids Res. 17, 9437.

Bhatia, P., Taylor, W., Greenberg, A., and Wright, J. (1994). Comparison of glyceralde- hyde-3-phosphate-dehydrogenase and 28S ribosomal RNA gene expression as RNA loading controls for northern blot analysis of cell lines of varying malignant potential. Anal. Biochem. 216, 223.

Blok, H. J., Gohike, A. M., and Akkermans, A. D. L. (1997). Quantitative analysis of 16S rDNA using competitive PCR and the QPCR System 5000. Bio Techniques 22, 700. Bonini, J. A., and Hofmann, C. (1991). A rapid, accurate nonradioactive method for quan-

titating RNA on agarose gels. Bio Techniques 11, 708.

Chretien, S., Dubart, A., Beaupain, D., Raich, N., Grandchamp, B., Rosa, 1, Goossens,

M., and Romeo, P. H. (1988). Alternative transcription and splicing of the human por- - 292 .

20 定量 PCR 技术

phobilinogen deaminase gene results either in tissue-specific or in housekeeping expres- sion. Proc. Natl. Acad. Sci. 85, 6.

Danielson, P., Forss-Petter, S., Brow, M., Calavette, L., Douglas, J. Milner, R., and Sutcliffe, J. (1988). A cDNA clone of the rate mRNA encoding cyclophilin. DNA 7, 261.

de Leeuw, W., Slagboom, P., and Vijg, J. (1989). Quantitative comparison of mRNA levels in mammalian tissues: 28S ribosomal RNA level as an accurate internal control. Nucleic Acids Res. 17, 10137.

DiCesare, J., Grossman, B., Katz, E., Picozza, E., Ragusa, R., and Woudenberg, T. (1993). A high-sensitivity electrochemiluminescence-based detection system for automated PCR product quantitation. Bio Techniques 15, 152.

Diviacco, S., Norio, P, Sentilin, L., Menzo, S., Clementi, M., Biamonti, G., Riva, S., Falaschi, A., and Giacca, M. (1992). A novel procedure for quantitative polymerase chain reaction by coamplification of competitive templates. Gene 122, 313.

Dodge, G. R., Kovalszky, I., Hassell, J. R., and Iozzo, R. V. (1990). Transforming growth factor B alters the expression of heparin sulfate proteoglycan in human colon carci- noma cells. J Biol. Chem. 265, 18023.

Farrell, R. E., and Greene, J. J. (1993). Regulation of c-myc and c-Ha-ras oncogene expres- sion by cell shape. J. Cell. Physiol. 153, 429.

Feroze-Merzoug, F., Berquin, I. M., Dey, J., and Chen, Y. Q. (2002). Peptidylprolyl iso- merase A (PPIA) as a preferred internal control over GAPDH and f-actin in quantita- tive RNA analyses. Bio Techniques 32, 776.

Flohr, A. M., Hackenbeck, T., Schlueter, C., Rogalla, P, and Bullerdiek, J. (2003). DNase I treatment of cDNA first strands prevents RT-PCR amplification of contaminating DNA sequences. Bio Techniques 35, 920.

Forster, T. (1946). Energiewanderung und Fluoreszenz. Naturwissenschaften 6, 166.

Forster, T. (1948). Zwischenmolekulare Energiewanderung und Fluoreszenz. Ann. Phys. (Leipzig) 2, 5S.

Fronhoffs, S., Totzke, G., Stier, S., Wernert, N., Rothe, M., Briining, T., Koch, B., Sachinidis, A., Vetter, H., and Ko, Y. (2002). A method for the rapid construction of cRNA standard curves in quantitative real-time reverse transcription polymerase chain reaction. Mol. Cell. Probes 16, 99.

Gaudette, M. F., and Crain, W. F. (1991). A simple method for quantifying specific mRNAs in small numbers of early mouse embryos. Nucleic Acids Res. 19, 1879.

Gilliand, G. S., Perrin, S., Blanchard, K., and Bunn, H. F. (1990). Analysis of cytokine mRNA and DNA: Detection and quantitation by competitive polymerase chain reac- tion. Proc. Natl. Acad. Sci. 87, 2725.

Haendler, B., and Hofer, E. (1995). Characterization of the human cyclophilin gene and of related pseudogenes. Eur. J. Biochem. 190, 477.

Higuchi, R., Dollinger, G., Walsh, P. S., and Griffith, R. (1992). Simultaneous amplifica- tion and detection of specific DNA sequences. Biotechnology 10, 413.

Higuchi, R., Fockler, C., Dollinger, G., and Watson, R. (1993). Kinetic PCR: Real time monitoring of DNA amplification reactions. Biotechnology 11, 1026.

Horikoshi, T., Danenberg, K. D., and StadIbauer, T. (1992). Quantitation of thymidylate synthase, dihydrofolate reductase, and DT-diaphorase gene expression in human tumors using the polymerase chain reaction. Cancer Res. 52, 108.

Ikonen, E., Manninen, T., Peltonen, L., and Syvanen, A. (1992). Quantitative determina- tion of rare mRNA species by PCR and solid-phase minisequencing. PCR Methods Applic. 1, 234.

Jensen, M. A., and Straus, N. (1993). Effect of PCR conditions on the formation of het- * 293 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

eroduplex and single-stranded DNA products in the amplification of bacterial riboso- mal DNA spacer regions. PCR Methods Applic. 3, 186.

Kinoshita, T., Imamura, J., Nagai, H., and Shimotohno, K. (1992). Quantification of gene expression over a wide range by the polymerase chain reaction. Anal. Biochem. 206, 231. |

Krieg, P. A., and Melton, D. A. (1987). Jn vitro synthesis with SP6 RNA polymerase. : Methods Enzymol. 155, 397.

Lau, W. Y, Lai, P B., Leung, M. F., Wong, N., Chen, G., Leung, T. W., and Liew, C. T. (2000). Differential gene expression of hepatocellular carcinoma using cDNA microar- ray analyses. Oncol. Res. 12, 59.

Lee, L. G., Connell, C. R., and Bloch, W. (1993). Allelic discrimination by nick-translation PCR with fluorogenic probes. Nucleic Acids Res. 21, 3761.

Leof, E. B., Proper, J. A., Getz, M. J., and Moses, H. I. (1986). Transforming growth fac- tor type beta regulation of actin mRNA. J. Cell Physiol. 127, 83.

Li, B., Sehajpal, P. K., Khanna, A., Vlassara, H., Cerami, A., Stenzel, K. H., and i Suthanthiran, M. (1991). Differential regulation of transforming growth factor beta and interleukin 2 genes in human T cells: Demonstration by usage of novel com- petitor DNA constructs in the quantitative polymerase chain reaction. J. Exp. Med. 174, 1259.

Linton, J. P., Yen, J. J., Selby, E., Chen, Z., Chinsky, J. M., Liu, K., Kellems, R. E., and Crouse, G. F. (1989). Dual bidirectional promoters at the mouse dhfr locus: Cloning and characterization of two mRNA classes of the divergently transcribed Rep-1 gene. Mol. Cell. Biol. 9, 3058.

Livak, K. J., Flood, S. J., Marmaro, J., Guisti, W., and Deetz, K. (1995). Oligonucleotides with fluorescent dyes at opposite ends provide a quenched probe system useful for detecting PCR product and nucleic acid hybridization. PCR Methods Applic. 4, 357.

Mansur, N., Meyer-Siegler, K., Wurzer, J., and Sirover, M. (1993). Cell cycle regulation of the glyceraldehyde-3-phosphate-dehydrogenase/uracil DNA glycosylase gene in normal human cells. Nucleic Acids Res. 21, 993.

Murphy L. D., Herzog, C. E., Rudick, J. B., Fojo, A. T., and Bates, S. E. (1990). Biochemistry 29, 10351. Oleary, K. A., Beck, T. W., and Kasper, C. B. (1994). NADPH cytochrome P-450 oxidore- ductase gene: Identification and characterization of the promoter region. Biochem.

Biophys. 310, 452.

Pernas-Alonso, R., Morelli, F., di Porzio, U., and Perrone-Capano, C. (1999). Multiplex semi-quantitative reverse transcriptase-polymerase chain reaction of low abundance neuronal mRNAs. Brain Res. Protocols 4, 395.

Robert, C., McGraw, S., Massicotte, L., Pravetoni, M., Gandolfi, F., and Sirard, M-A. (2002). Quantification of housekeeping transcript levels during the development of bovine preimplantation embryos. Biol, Reprod. 67, 1465.

Ruano, G., and Kidd, K. K. (1992). Modeling of heteroduplex formation during PCR from mixtures of DNA templates. PCR Methods Applic. 2, 112.

Schneeberger, C., Speiser P, Kury, F., and Zeillinger, R. (1995). Quantitative detection of reverse transcriptase-PCR products by means of a novel and sensitive DNA stain. PCR Methods Applic. 4, 234.

Siebert, P.D., and Larrick, J. W. (1992). Competitive PCR (product review) Nature 359, 557.

Siebert, P. D., and Larrick, J. W..(1993). PCR MIMICS: Competitive DNA fragments for use as internal standards in quantitative PCR. BioTechniques 14, 244.

Smith, R. D., Brown, B., Ikonomi, P., and Schechter, A. N. (2003). Exogenous reference RNA for normalization of real-time quantitative PCR. Bio Techniques 34, 88.

Smith, R. D., Malley, J. D., and Schechter, A. N. (2000). Quantitative analysis of globin

- 204.

20 定量 PCR 技术

gene induction in single human erythroleukemic cells. Nucleic Acids Res. 28, 4998.

Solomon, D. H., O’Driscoll, K., Sosne, G., Weinstein, I. B., and Cayre, Y. E. (1991). 1 alpha,25-dihydroxyvitamin D3-induced regulation of protein kinase C gene expres- sion during HL-60 cell differentiation. Cell Growth Differentiation 2, 187.

Spanakis, E. (1993). Problems related to the interpretation of autoradiographic data on gene expression using common constitutive transcripts as controls. Nucleic Acids Res. 16, 3809.

Steen, A. M., Luthman, H., Hellgren, D., and Lambert, B. (1990). Levels of hypoxanthine phosphoribosyltransferase RNA in human cells. Exp. Cell Res. 186, 236.

Tepper, C. G., Pater, M. M., Pater, A., Xu, H., and Studzinski, P. (1992). Mitochondrial nucleic acids as internal standards for blot hybridization analyses. Anal. Biochem. 203, 127.

Vanden Heuvel, J. P., Tyson, F. L., and Bell, D. A. (1993). Construction of recombinant RNA templates for use as internal standards in quantitative RT-PCR. BioTechniques 14, 395.

Voges, D., Zwickl, P., and Baumeister, W. (1999). The 26S proteasome: A molecular machine designed for controlled proteolysis. Ann. Rev. Biochem. 68, 1015.

Wages, J. M., Jr., Dolenga, L., and Fowler, A. K. (1993). Eletrochemiluminescent detection and quantitation of PCR-amplified DNA. Amplifications (PE) 10, |.

Wang, A. M., Doyle, M. V., and Mark, D. F. (1989). Quantitation of mRNA by the poly- merase chain reaction. Proc. Natl. Acad. Sci. 86, 9717.

Wang, S., Murtagh, J. J., Jr., Luo, C., and Martinez-Maldonado, M. (1993). Internal cRNA standards for quantitative Northern analysis. Bio Techniques 14, 935.

Wettwer, C. T., Herrmann, M. G., Moss, A. A., and Rasmussen, R. P. (1997). Continuous fluorescence monitoring of rapid cycle DNA amplification. Bio Techniques 22, 130. Wilkinson, T. E., Cheifetz, S., and DeGrandis, S. A. (1995). Development of competitive PCR and the QPCR System 5000 as a transcription-based screen. PCR Methods

Applic. 4, 363.

(254%; WAR)

« 295 -

21 RE Mis

21.1 基本 原理

决定 细胞 赋予 生物 基因 表达 转录 微妙 优美 交响 相近 细胞 相同 表达 哪些 基因 表达 许多 追求 目标

文献 RNA 作为 基因 表达 指标 聚合 (PCR) 生物 主流 工具 通常 杂交 方法 方法 mRNA cDNA 相同 序列 (Sargent Dawid, 1983; Hedrick 1984; Fornace Mitchell, 1986; Sargent, 1987; Orr ,1992; Lisitsyn ,1993; Zhang ,1995)。 表达 产物 使 物理 方法 离开 羟基 8 〈Ber- nardi, 1971; Sargent,1987)、 标记 结合 俘获 修饰 琼脂 (Welcher ,1986) PCR 俘获 方法 (Sharma ,1993) 8 (Rodriguez Chader, 1992; Lambert Williamson, 1993; Lopez-Ferndndez del Mazo, 1993; Coche ,1994) 标记 结合 (Travis Sutcliffe, 1988), 完整 基因 交叉 杂交 (Kulesh ,1987; Cochran ,1987) PCR (Houge, 1993) 方法 修改 方法 实际 方面 原来 方法 方法 现在 效率 灵敏 方面 没有 方法 单独 细胞 裂解 显示 基因 表达 状况

术语 代表 整体 概念 相对 特异 转录 序列 确定 基因 表达 调节 控制 章节 讨论 许多 技术 基础 抗体 进行 特异 非特 免疫 沉淀 (第 6 ) 完全 核酸 基础 减法 核酸 吸引 结果 细胞 变化 相关 完全 相关 序列

21. 1 物理 转录 共同 序列 差异

@ 羟基 { (Cas(PO,);OH].) 磷酸 溶解 结晶 历史 GRR) 纯化 介质 独特 使 核酸 核酸 (cDNA : mRNA DNA : DNA) 浓度 磷酸 核酸 核酸 吸附 〈0. 12mol/L Na,H,PO,, pH 6.8) 核酸 核酸 0. 48mol/L Na,H,PO,, pH 6. 8) 才能 60 清楚 螺旋 DNA 线形

@ 2A 7 poly(A) mRNA 纯化 基本 修改 许多 纯化

+ 296 -

21 转录

1 2 3 4. 5 | lye Ab ss pao. B B cDNA $B“ 4B mRNA:cDNA : 调控 转录 (生物 ) B (生物 ) | 同性 捕获 Le |

直接 沉淀 21.1 杂交 鉴定 差异 表达 序列 策略 A mRNA CDNA. Bio-21-dUTP 使 翻译 cDNA 生物 然后 CDNA A 细胞 状态 B 细胞 正常 转录 mRNA RNA : cDNA 合体 物理 方法 方法 整个 文库 筛选

结果 克隆 表达 研究 方法 筛选 那些 差异 序列 那些 抑制 状态 重新 恢复 表达 序列 PCR 联合 使 表达 非常 mRNA 检测

实验 共有 表达 序列 调节 表达 序列 非常 吸引 近年 比较 实验

@ 休止 细胞 衰老 细胞 比较

@ 细胞 终极 细胞 比较

@@ 感染 细胞 感染 细胞 比较

@ 进行 渗透 调节 盐水 淡水 肾脏 结构 改变

© 良性 肿瘤 实体 比较

© 细胞 建立 细胞 比较

@ 苹果 橘子 桃子 ) 比较

然后 任何 群体 任何 原因 进行 结果 获得 细胞 状态 A 状态 B 变化 相关 调节 序列

21.2 关键 问题

方法 表达 工作 研究 清楚 懂得 操作 程序 术语 概念 © 实验 〈tester) WA AMAL 〈target), 包括 研究 诱导 那些 序列 (driver) 参考 序列 包含 那些 诱导 实验 结束 查询 序列 297 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Q 理解 细胞 特别 实验 生化 改变 实验 实验 驱动 话说, A cDNA 实验 B cDNA (或 mRNA) 驱动 cDNA 实验 ,而 A cDNA (或 mRNA) 驱动 利于 鉴定 设计 实验 诱导 抑制 序列

@ 杂交 实验 实际 操作 摩尔 实验 确保 动力 使 杂交 完全 共有 序列 驱动 样品 常常 帮助 实验 样品 10 使 30 : 1,

® 杂交 任何 驱动 互补 序列 增多

©) 效率 依赖 杂交 动力 效率 整个 严格 维持 效率 依赖 驱动 样品 持续 存在

© 通常 假定 PCR cDNA PCR 引物 设计 合理 核酸 - 知识 需要 选择 RNA poly(A)” 了。

@ 生物 标记 cDNA RNA 杂交 设计 体外 转录 使 生物 标记 核糖 磷酸 随机 引物 、PCR 使 脱氧 标记 使 生物 标记 随机 引物 PCR 方法 生物 生物 标记 脱氧 核糖 磷酸 PCR 标记 足够 标记

@ 通常 驱动 样品 情况 样品 相同 序列 效率 利于 单一 序列

© PCR 优点 片段 19 TA 克隆 TOPO 克隆

@ 差异 表达 克隆 必须 甚至 方法 进行 筛选 肯定 实验 结果 正确 方法 包括 Northern 12 ) 保护 G16 )、 Ht PCR 方法 CH 20 22 23 ) Southern (Thomas ,1994) 明白 序列 肯定 差异 表达 目标 基因

@ 立即 使 CDNA 乙醇 沉淀 形式 储存 80C, 溶液 冰冻 储存 80C。 CDNA 合成 存储 明智

21.3 -校正 PCR

鉴定 差异 表达 基因 方法 PCR 基础 核酸 校正 PCR (Siebert ,1995) 方法 mRNA 常用 方法 特点 VA PCR 基础 单一 接头 设计 系统 (PCR- EDNA AG; BD Biosciences) 关键 21. 2 体系 结构 利于 使 差异 序列 标准 通过 原始 生物 材料 序列 浓度 差不多 鉴定 差异 表达 序列 理想 序列 难得 表达 甚至 表达 CDNA, 因此 标准 cDNA 测定 100 克隆 序列 完全 调和 序列 变化 结果 细胞 那些 保留 相对 - 298 -

21 ”转录 减法

cDNA 合成 Rsa | Wifi 接头 连接 接头 实验 驱动 实验 驱动 杂交 <DNA cDNA Rsa | | 实验 片段 连接 | | 达到 杂交 动力 平衡 使

实验 ;而 差异 表达 序列

mRNA 样品 制备 平头 片段 驱动 样品 接头

杂交 PCR PCR ee | 差异 表达 序列 产生 || 抑制 PCR, 使 差异 | | 降低 PCR 模板 表达 序列 指数

差异 表达 序列

21.2 BD Biosciences Clontech 公司 PCR-ifiit cDNA 系统 (Bois: 637401) 概要

cDNA 利得

实际 ,PCR- 方法 取得 结果 技术 方法 竞争 -校正 PCR 转录 差异 显示 产生 完全 基因 表达 情况 5 任何 序列 容易 通过 它们 驱动 样品 1. 5 基因 PCR- 方法 困难

21. 3 涉及 实验 样品 接头 样品

接头 1 5 'CTAATACGACTCACTATAGGGCTCGAGCGGCCGCCCGGGCAGGT 3’ 3’ GGCCCGTCCA 5’ T7

(a) 5' CTAATACGACTCACTATAGGGC 3! << PCR 1

PCR 1 wars 3 TCGAGCGGCCGCCCGGGCAGGT 3’

接头 2R

5’ CTAATACGACTCACTATAGGGCAGCGTGGTCGCGGCCGAGGT 3’ 3'GCCGGCTCCA 5’

T7

(b) 5! CTAATACGACTCACTATAGGGC 3’ <a PCRS| 771

PCR 2R Id> 5 AGCGTGGTCGCGGCCGAGGT 3’

引物 1 引物 1 =P 2ZZv>

i831

< 1 引物 2R 引物 1

21.3 通过 接头 连接 备用 杂交 PCR 实验 cDNA。 进行 实验 cDNA 必须 接头 〈BD Biosciences Clontech )

(c)

¢ 299 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

驱动 仍然 连接 接头 实验 cDNA 限制 Rea TABI, Rea T 识别 4 序列 平头 利于 接头 连接 方案 特点 5 磷酸 .因此 sDNA 磷酸 @ cDNA BE ,@@ 相同 序列 反应 利于 引物 配对 CR。

杂交 实验 样品 适当 混合 结果 21. 4), 差异 表达 序列 生出 模板 进行 cDNA 引物 进行 PCR Be 现象 产物 相同 序列 21. 5) 差异 表达 序列 进行 克隆 测序 CA 21. 6) PCR PS AT 片段 垃圾 适量 鉴定 cDNA 绝对 需要 笔者 PCR 产物 克隆 PCR 产物 DNA 片段 意义 片段

接头 1 实验 cDNA 驱动 cDNA( ) 接头 2R 实验 cDNA ———

———— Se | 杂交

杂交 : 混合 反应 变性 驱动 样品 ; 退火

5 <_—_———3 e 指数 ,( e 引物 结合 Jos 序列 实际 端的 序列 校正 PCR 除了 非常 校正 PCR 附注 ) 21.4 -校正 EDNA (实验 驱动 )

相互 作用 。BD Biosciences Clontech (PCR-Siv cDNA 系统 ) -校正 PCR 方法 杂交 重要 ; 杂交 6 12h,

杂交 杂交 超过 12h, 实验 - 300

21 ”转录 减法

68 C 退

_ 接头 引物 DNAG AK

引物 结合 : 7 = 结构 校正 PCR

21.5 校正 PCR。PCR 特异 形成 结构 受到 接头 开始 DNA 特异 顺利 进行 。BD Biosciences Clontech

21.6 -校正 PCR 典型 结果 RNA 样品 精确 控制 进行 差异 表达 检测 样品 “A” 、“B” “C” 进行 配对 进行 (A—F ) 〈A R ) 产物 PCRPW. HR EB—A

道中 差异 表达 序列 克隆 进一步 实验 验证 差异 表达 1,A ; 2,A ; 3,B ; 4, 标准 ; 5,B ; 6,C ; 7,C

配对 影响 杂交 形成

-校正 PCR 结束 CDNA 连接 转化 杆菌 CDNA 重要 否则 进一步 质粒 制备 测序 费时 初步 快速 筛选 方法 确定 差异 状态 杂交 标记 实验 进行 杂交 标记 驱动 复制 - 筛选 500), 途径 克隆 96 FLAK EL, BPP SE 200p] 10%% 适当 抗生素 LB 培养 。37C 复制 - 21. 7) 样品 接种 平板 相应 生长 容易 跟踪 克隆 原先 复制 生长 标准 生长 克隆 杂交 产生 明确 信号 实验 驱动 显示 克隆 预期 差异 表达 克隆 克隆 制备 质粒 测序 生长 含有 甘油 培养 96 FL RE, HE AT DA A

301 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

21.7 细菌 克隆 复制 - 工具 配合 96 48 齿 96

生长 别克 48 TILA 200uD. MRAM EAB. ENB 1.5% 琼脂 平板 (含有 适当 抗生素 ) 培养 平板 非常 规则 几何 形状 相当 杂交 几何 形状 杂交 信和 号, 容易 96 获得 阳性 克隆 。96 利于 克隆 构建 储存

存储 80C 克隆 活力 虽然 -校正 PCR 方法 需要 熟练 技能 方法 相对 费时 优点 非常 突出

21.4 # PCRER

目前 常用 方法 杂交 基础 关键 除去 细胞 共同 序列 方法 PCR 基础 联合 进行 限制 目的 序列 进一步 诱导 序列 相同 实验 结果 方法 捕捉 诱导 序列 方法 杂交 基础 ,PCR 方法 随机 引物 制备 EDNA, 进行 克隆 建立 cDNA 直接 核酸

通过 比较 细胞 鉴定 差异 表达 序列 PCR 直接 方法 利用 生物 亲和力 简单 / 仿 实现 21.8)。 : 生物 标记 驱动 mRNA, 实验 CDNA 杂交 包括 杂交 mRNA 杂交 CDNA : mRNA 结合 溶剂 /氯仿 除去 导出 cDNA 乙醇 沉淀 纯化

生物 极为 简单 使 方法 生物 标记 样品 (DNA, RNA KE AUR) 混合 功率 白光 (理想 波长 350~370nm) 进行 照射 标记 RNA 立即 使 生物 标记 DNA 蛋白 稳定 20C 储存 活化 生物 标记 非常 标记 方法 使 情况 2 3 标记

杂交 通常 非常 进行 24h, 48h。 样品 稀释 防止 现任 何不 正确 杂交 生物 结合 生物 杂交 驱动 mRNA 杂交 形成 cDNA : mRNA # ARE. B /氯仿 结合 复合 乙醇 沉淀 诱导 特异 cDNA。

302 -

21 转录 减法

( 诱导 mRNA)

实验

(诱导 mRNA) 差异 表达 序列

差异 表达 序列

| | 生物 标记

(实验 cDNA | 生物 标记 驱动 mRNA

\ 严谨 杂交 yh

cDNA:mRNA (生物 标记 )

驱动 mRNA( 标记 ) 诱导 cDNA( 生物 标记 )

; / 仿

cDNA:mRNA (生物 标记 ) Sy gel eee salle

21.8 (8 AA AE Rb ic BY SK oh 2 FF cats Be Bi / SA SH EK EIT Ze Dh ARC

诱导 cDNA( 生物 ) “可 进一步 研究

21.5 问题 解决

(1) 必须

© 质量 RNA

使 质量 RNase 技术

FA a RAM BK Eb RA HE Hy BS ER op RE

酸性

缓冲 进行 沉淀

样品 RNase DNase

DEPC 配制 70% 70%% 洗涤 RNA 沉淀 Here.

恰当 储存 纯化 RNA@。

@ cDNA PCR

cDNA 反应 相同 RNA (200~300ng).,

重申 使 RNase H 活性 制剂

避免 使 依赖 Mn2 +

© NP-40 裂解 制备 重复 RNA 需要 熟练 技能 @@ 阳离子 定量 结合 dNTP, cDNA 合成 PCR 造成 影响 @O 杂交 许多 PCR 方法 容忍 降解 mRNA。

303 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

使 cDNA 反应 混合 使 PCR 混合 使 PCR 方法 使 混合 保证 反应 反应 重复 (2) @ 严重 优化 Mg?* 浓度 需要 ) © yR/Z> PCR 循环 减少 反应 稍稍 增加 退火 温度 @ 产物 检查 RNA 完整 cDNA 合成 反应 RNA 抑制 (RNasin) RT PCR 质量 必需 反应 确认 充分 混合 检查 PCR 反应 参数 @ 低产 © 样品 裂解 完全 原因 检查 RNA 沉淀 溶解 完全 © Yl) Azxio/Azso 比值 1. 65 表明 蛋白质 杂质 污染 检查 RNA 降解 动物 取出 立即 冰冻 纯化 RNA 储存 20C 80'C 溶液 反应 消除 RNase DNA 没有 DNase 受到 DNA 污染 © 数据 重复 使 200n1 反应 PCR 反应 参数 采用 PCR 19 ) 细胞 样品 配制 单个 体积 反应 混合 反应 。, 使 引物 引物 配对 Tn 接近 使 合成 PCR 产物 (Tag t+ Pwo) 矿物 采用 循环 同方 RNA 情况 同一 RNA 情况 检查 细胞 状态 细胞 周期 重复 优化 循环 反应 同一 进行 反应 仅仅 同样 仪器 )。 (3) 建议 «+ 304 -

21 转录 减法

变性 步骤

© 变性 温度 90~92°C

延伸 温度 68°C

循环 适当 〈5 20s/ )

精确 取样 结果 实验 开始 微量 重新 校正 备用 取样 取样 换取 避免

细胞 培养 (10 ng/ml) 线 ) 4~6h 裂解 细胞 mRNA 诱导 蛋白质 翻译 抑制 mRNA 细胞 积累 特别 正常 忍受

许多 PCR 技术 质量 RNA 通常 缓冲

使 含有 引物 试剂 自己 制备 引物

© 微量 离心 进行 DNA mRNA 减少 疏水 黏附 减少 损失 少量 样品 尤其 附录 8 操作 步骤 )

21.6 参考 文献

Bernardi, G. (1971). Chromatography of nucleic acids on hydroxyapatite columns. Methods Enzymol. 21, 95.

Coche, T., Dewez, M., and Beckers, M. C. (1994). Generation of an unlimited supply of subtracted probe using magnetic beads and PCR. Nucleic Acids Res. 22, 1322.

Cochran, B. H., Zumstein, P., Zullo, J., Rollins, J., Mercola, M., and Stiles, C. D. (1987). Differential colony hybridization: Molecular cloning from a zero data base. Methods Enzymol. 147, 64.

Fornace, A. J., and Mitchell, J. B. (1986). Induction of B2 RNA polymerase III transcrip- tion by heat shock: Enrichment for heat shock induced sequences in rodent cells by hybridizaticn subtraction. Nucleic Acids Res. 14, 5793.

Hedrick, S. M., Cohen, D.I., Nielsen, E. A., and Davisw, M. M. (1984). Isolation of cDNA clones encoding T-cell specific membrane-associated proteins. Nature 308, 149.

Houge, G. (1993). Simplified construction of a subtracted cDNA library using asymmet- ric PCR. PCR Methods Applic. 2, 204.

Kulesh, D. A., Clive, D. R., Zarlenga, D. S., and Greene, J. J. (1987). Identification of inter- feron-modulated proliferation-related cDNA sequences. Proc. Natl. Acad. Sci. 84, 8453.

Lambert, K. N., and Williamson, V. M. (1993). DNA library construction from small amounts of RNA using paramagnetic beads and PCR. Nucleic Acids Res. 21, 775.

Lisitsyn, N., Lisitsyn, N., and Wigler, M. (1993). Cloning the differences between two com- plex genomes. Science 259, 946.

Lopez-Fernandez, L. A., and del Mazo, J. (1993). Construction of subtractive cDNA libraries from limited amounts of mRNA and multiple cycles of subtraction. Bio Techniques 15, 654.

Orr, S. L., Gese, E., and Hood, L. (1992). A new approach to understanding T cell devel- opment: The isolation and characterization of immature CD4-, CD8-, CD3- T cell

* 305

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

cDNAs by subtraction cloning. Mol. Biol. Cell 3, 761.

Rodriguez, I. R., and Chader, G. J. (1992). A novel method for the isolation of tissue- specific genes. Nucleic Acids Res. 20, 3528.

Sargent, T. D. (1987). Isolation of differentially expressed genes. Methods Enzymol. 152, 423.

Sargent, T. D., and Dawid, I. B. (1983). Differential gene expression in the gastrula of Xenopus laevis. Science 222, 135.

Sharma, P., Lonneborg, A., and Stougaard, P. (1993). PCR-based construction of sub- tractive cDNA library using magnetic beads. Bio Techniques 15, 610.

Siebert, P. D., Chenchik, A., Kellogg, D. E., Lukyanov, K. A., and Lukyanoy, S. A. (1995). An improved method for walking in uncloned genomic DNA. Nucleic Acids Res. 23, 1087.

Thomas, M. G., Hesse, S. A. Al-Mahdawi, S., Bui, T. D., Moniz, C. F., and Farzaneh, F. (1994). Procedure of second-round differential screening of cDNA libraries. BioTechniques 16, 229.

Travis, G. H., and Sutcliffe, J. G. (1988). Phenol emulsion-enhanced DNA-driven subtrac- tive cDNA cloning: Isolation of low-abundance monkey cortex-specific mRNAs. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 85, 1696.

Welcher, A. A., Torres, A. R., and Ward, D. C. (1986). Selective enrichment of specific DNA, cDNA, and RNA sequences using biotinylated probes, avidin, and copper- chelate agarose. Nucleic Acids Res. 14, 10027.

Zhang, M., Zou, Z., Maass, N., and Sager, R. (1995). Differential expression of elafin in human normal mammary epithelial cells and carcinomas is regulated at the transcrip- tional level. Cancer Res. 55, 2537.

(EKREF; WAR BER)

* 306 -

22 mRNA ESE

22.1 基本 原理

获得 克隆 鉴定 样品 基因 科学 研究 重要 问题 细胞 基因 表达 调控 关注 细胞 mRNA 表达 实验 复杂 相应 变化 合乎 逻辑

章节 讨论 校正 PCR 作为 方法 通过 基本 样品 比较 样品 转录 产物 表达 差异 关注 途径 实现 相同 目的 方法 互补 DNA (cDNA) 合成 聚合 (PCR) 基础 结合 使 通过 电泳 (PAGE) 比较 鉴定 实验 样品 差别 使 相同 引物 相同 RNA PCR 产物 道中 相同 重要 方法 清晰 辨认 同一 缺失

方法 改变 命名 科学 描述 方法 mRNA 差异 显示 (Liang Pardee,1992) 标题 立即 认同 “差异 显示 PCR”, 简称 DDPCR® 繁琐 DDRTPCR (Bauer ,1993) 描述 策略 引物 微妙 设计 特点 RNA EOC A RNA 任意 引发 PCR (RNA arbitrarily primed PCR, RAP-PCR) (Welsh 1992; McClelland Welsh,1994)。 技术 方法 转录 产物 复杂 进行 结果 完整 复杂 程度 差别 基本 结果 相同 方法 原先 技术 改进 (Liang ,1992; Liang ,1993; Mon 1994; Liang ,1995,Zhao ,1995) 简单 方法 差异 显示 FCR CDDPCR).

22.2 —-RO DDPCR 重要 依靠 PCR 速度 异性 灵敏 PCR 细胞 产生

@ mRNA 差异 显示 专利 GenHunter 公司 (Nashvillte,TN) ,GenHunter 公司 唯一 授权 差异 显示 PCR 试剂 公司 访问 www. genhunter. com 获得 信息 © 使 缩写 注意 使 写字 缩写 ddPCR 代表 PCR, * 307

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

转录 产物 CDNA 简单 纯化 RNA 合成 cDNA, cDNA 产物 传统 CDNA 合成 ,DDPCR 样品 进行 JLA cDNA 合成 反应 反应 特定 进行 任何 反应 PCR 产物 产物 ,DDPCR 超群 (RT-PCR) 产物 通过 电泳 样品 直接 进行 比较 ) 步骤 同时 检查 转录 序列 规范 方法 。DDPCR 主要 步骤

@ RNA DDPCR 鉴定 调控 序列 需要 质量 RNA. WH DDPCR 方法 使 -酸性 纯化 RNA 广泛 方法 参考 5 6 步骤, 使 商品 完成 RNA 。DDPCR 方法 优点 缺点 22. 1。 优点 需要 少量 RNA。 同一 研究 同一 同一 材料 纯化 RNA, 乙醇 沉淀 形式 储存 真正 确保 模板 需要 重复 实验 重复 数据 poly (A)+RNA 必需 推荐

a. 选择 poly(A)+RNA cDNA 合成 没有 特异 <

b. 选择 poly(A)* RNA 实际 丢失 代表 那些 ) 转录

c. 样品 poly(dT) 污染

d. poly(A)* RNA 选择 问题 引入 RNase 污染 因而 降低 样品 FATE.

S

22.1 差异 显示 PCR 方法 优点 缺点 优点 反应 快速 简单 转录 产物 非常 方法 通用 . © 鉴定 差异 基因 表达 系统 方法 © 需要 推荐 poly(A)+ RNA 同时 显示 调和 基因 需要 微克 RNA( 3pg) 数据 重复 缺点 产生 ( 20% ~ 40%) 需要 纯度 RNA © 反应 污染 尤其 基因 DNA 污染 非常 敏感 观察 © 电泳 预料 PCR 产物 进一步 确认 ,用 © 样品 进行 完全 比分 , 进行 PCR 需要 许多 PCR 试剂 纯化 cDNA CDNA 序列 污染 转录 产物 3 序列 “此 技术 模板 质量 影响 因素 敏感 ,这 标准 PCR 主要 问题 © 数据 重复 问题 - 308 -

22 mRNA 差异 显示

重要 DNase 除去 样品 基因 DNA。 任何 互补 DNA RNA 进行 互补 配对 。DNA 效率 通过 反应 验证 讨论

@ cDNA 下游 引物 设计 DDPCR cDNA 合成 标准 步骤 RNA 样品 进行 cDNA 合成 反应 反应 mRNA cDNA。 这样, 产生 cDNA, 电泳 表现 离散 连续 弥散 使 通用 结构 引物 结果

TTC TETTTITV SEETTTTTTTRWV 2 VHA, CRG.

3 '- 兼并 确保 MRNA ; ,3 - poly(A)+ 5 配对 实际 CDNA 合成 反应 poly(A) 花费 宝贵 oligo(dT) (5'TTTTTTTTTTTTT), EUS poly(A) 任何 配对 甚至 转录 产物 编码 Rix.

常用 适合 设计 方法 cDNA 产生 基础 mRNA poly(A) 方法 通用 结构 标准 oligo(dT) 3 附加 (Liang ,1994), Tr VCS! TITTTTTTTTTTV, V=A、C G)。 产生 CDNA, CDNA 1/3。 锁定 方法 简化 鉴定 方法 通用 结构 TiVV (5 TTTTTTTTTTTVV, V=A、C G)。 3 末端 兼并 引物 3 末端 3 ACA),BB (其 B 互补 V ) RNA 转录 产物 进行 退火 合成 EDNA。 使 DDPCR 方法 研究 认为 使 3 兼并 引物 PCR 产物 具有 代表 反映 mRNA 状态 方法 重复

合共 42 16 引物 3 端的 排列 :

AAT) DBA In Weak Th RAL AG CER AGG Te AG’ &'€Gi44 GG wee ADR ICR 7 BGl awe

立即 TT 引物 引物 没有 poly(A) BN RNA 引物 配对 方法 连续 弥散 cDNA@。 3- TA、TC TG 引物 它们 3 兼并 引物 Tul 结构 相同 研究 报道 3 AT、CT GT 使

@ 引物 TiiTT oligo (dT), 使 PCR 产生 cDNA, PCR 需要 精心 选择

309 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

产生 许多 弥散 因为 程度 容易 引起 错误 引导 ”。 同时 序列 mRNA EDNA 5'...ACAAAAAAAAAAAAAAAAAA3 5! ++» AGAAAAAAAAAAAAAAAAAAS' 5! «+» AUAAAAAAAAAAAAAAAAAAS’ 原因 AT 、CT at GT 引物 取决 使 实验 计划 引物 进行 9 12 cDNA 合成 反应

AA CA GA AA CA GA AC CC GC AC CC GC AG CG GG AG CG GG

er GT GT 笔者 实验 9 AR ES: 5'TTTTTTTTTTTAA 5/ TLEPLETEAT MC 5’ TLTETFEITTTIITAG 5S TTTEET PT TRrCA TTT ot reer bec STREET TLE rece STTTTTISULTIGA SSTTTTUT PTT TIrGe Sar LITILi rT ba 'Ge

仔细 使 3' AT. CT GT 5' 设计 序列 《启动 序列 克隆 ) 使 DDPCR 产物 合成 操作

@ cDNA 合成 mRNA 差异 显示 RNA 首次 进行 cDNA 合成 反应 任何 广泛 CDNA 合成 体系 方便 使 合成 试剂 作为 整个 系统 GenHunter 购买 RNA 固有 稳定 cDNA 合成 使 少量 RNA。 反应 特性 4 (di FA RNase -的 18 ) 进行 DDPCR 使 许多 表现 RT-PCR 系统 重要 合成 cDNA。 效率 产物 引物 进行 序列 PCR

上游 引物 设计 引物 设计 引物 那么 明显 结构 特点 实验 使 24 10 差异 显示 取得 使 13 引物 取得 重复 认为 ?” 的、 必需 完全 没有 使 Uo RRA Cot 10 ) 413 13 ) 作为 引物 文献 “材料 方法 ”中 放弃

@ 引物 除了 3 容忍 。cDNA 合成 、PCR 技术 需要 3 末端 3 -OH 模板 配对

- 310 +

22 mRNA 差异 显示

教训 “…… 设计 引物 ……” 意味 随机 选择 兼并 序列 杂烩 使 引物 平均 〈G C) A GbR 50%) AA 形成 引物 配对 引物 相对 严谨 引物 退火 引物 ?7 8 模板 配对 相对 严谨 配对 稳定 DDPCR 必要 步骤 使 自然 产生 任何 信息

合理 例子 :

5'GATCATAGCC 5'GATCCAGTAC 5 AAACTCCGTC

5'GATCATGGTC

5'GTTTTCGCAG 5'GATCTGACAC 5'TGGATTGGTC 5'GGAACCAATC 5'GATCAATCGC 5'TACAACGAGG 5'GATCTCAGAC 5'GATCACGTAC

5'CTGCTTGATG 5'GATCGCATTG 5'TGGTAAAGGG 5'TTTTGGCTCC 5'TACCTAAGCG 5'GATCTAACCG 5'TCGGTCATAG 5’'GATCTGACTG 5'TCGATACAGG 5'GATCAAGTCC 5'GGTACTAAGG SLL LALCC

cDNA 合成 进行 PCR 使 EDNA

© PCR PCR 进行 9 24 引物 2 CDNA 同时 进行 反应 必要 9 cDNA 合成 反应 8 储存 80C, 使 进行 PCR DDPCR 样品 目的 cDNA 合成 反应 研究

a. 反应 情况 。DDPCR 循环 情况 标准 PCR 循环 退火 温度 ,DDPCR 往往 需要 进行 40 循环 72°C 进行 引物 延伸 5 10min。 需要 非常 RNA (第 7 ), 使 达到 检测 需要 增加 循环 进行 DDPCR 根据 反应 确定 反应 参数 ;, 时, 反应 容忍 保证 cDNA 进行 PCR 设备 进行 DDPCR。 参数 往往 需要 进行 摸索 循环 通过 参数 循环 程序 :

94°C 3min 94°C 20s 循环 参数 40°C ws 循环 72°C 30s 延伸 72°C 5min 保存 4°C

b. 矿物 进行 DDPCR 避免 使 老式 使 矿物 循环 推荐 使 PE/Applied Biosystems Model 9700 授权 循环 。311 >

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

e, 反应。 矿物 使 常常 使 明显 影响 重复 技术 灾难 结果 实验 没有 仪器 进行 实验

距离 PCR 技术 结合 活性 产生

非常 具有 真性 PCR 产物 实验 DDPCR 技术 虽然 差异 显示 产生 基因 那样 PCR 产物 协同 工作 效率 使 相对 非常 mRNA 否则 序列 检测 ) 通常 Taq 聚合 稳定 聚合 使 常用 例子 Taq 聚合 Pwo 聚合 22. 2) 。Tad RAB 缺少 校对 活性 〈3'->5/ ) 产生 2 3kb PCR 产物 HON. Pwo 聚合 校对 活性 使 Tag 聚合 频率 减少 原来 反应 管内 作用 克服 Taq 聚合 单独 使 PCR 产物 限制 具有 Pwo 聚合 稳定 Taq 聚合 产物 使 稀少 检测 cDNA 混合 校对 功能 测序 数据

22.2 稳定 混合 协同 作用

半衰期 95°C 45min 5!» 3! EMI HE 4. 5'—> 3 核酸 活性 ar 3 5 核酸 活性 (校对 活性 )

Thermus aquaticus Pyrococcus woesei

d. 恰当 定数 极为 重要 DDPCR 产生 错误 技术 合适 必要

进行 RNA 同时 进行 CRT) 产物 产生 制备 RNA 没有 基因 DNA 污染 PCR 产物 必须 进行 DNase (无 RNase DNase RNA 同方 使 DNase 自动 RNA 样品 RNA DNase 样品 进行 沉淀 节省 RNA 样品 含有 基因 DNA 污染 使 密度 梯度 离心 纯化 样品 RNase ft) DNase |

引物 反应 引物 反应 激酶 标记 5 标记 引物 产生 放射 显影 引物 单独 产生 PCR 产物 观察

简单 确定 差异 产物 真实 方法 同样 样品 浓度 进行 同一 RNA 样品 浓度 反应 浓度 样品 没有

@ 索取 授权 循环 产品 目录 联系 PE/Applied Biosystems,Director of Licensing,850

Lincoln Center Drive, Foster City, CA 94404, 电话 : 650-570-6667.

¢ 312

22 mRNA 差异 显示

真正 阳性 结果 进一步 研究 步骤 避免 研究 结果 取样 电泳 误差 造成 信号 强度 差别 )

鉴定 同一 进行 电泳 反应 标记 “〈 那些 实验 序列 ) X 射线 使 信号 信号 显影 反应 “指纹 方法 检查 样品 方法 “路 重复 实验 显现 @8。 ,DDPCR 8@8, RNA 样品 复杂 性: 电泳 信号 强度 合成 PCR 产物 模板 正比

e. ,DDPCR 实验 进行 替代 样品 进行 实验 考虑 关键 问题 重复 反应 结果 引物 启动 PCR 帮助

© PCR 产物 DDPCR PCR 结果 激动 基因 调节 甚至 观察 序列 结果 观察 方面 方法 满意 观察 PCR 产物 放射 显影 合适 方法 清晰 显示 结果 观察 DDPCR 产物 方法 灵敏 : 荧光 标记 @ [35S]dATP,[33P]jdATP, ,SYBR 绿 1, RAE.

荧光 标记 灵敏 23S ASP 放射 标记 相同 工作 危害 灵敏 文大 推荐 放射 标记 方法 DDPCR 鉴定 调节 序列 «(Lohman , 1995) SYBR 绿 方便 显示 产物 观察 表达 差别 显示 反应 正常 少量 样品 进行 3% 染料 SYBR 绿 染色 初步 确定 DDPCR 产物 丙烯 酰胺 进行 电泳

文献 报道 普遍 使 变性 〈6%% 酰胺 ,8. 3mol/L RB) DDPCR 产物 变性 需要 ,DDPCR 先进 离心 浓缩 超过 10min, 电泳 灵敏 清晰 程度 影响 尽量 避免 使 真空 浓缩 方法 导致 同样 差异 产生 容易 辨别 进行 标准 DNA 测序 电泳 采用 恒定 功率 50W 底部 Whatman 滤纸 进行 真空 干燥 (80°C, 2h), 线 回收 目的 策略 同时 X 线 作为 实验 记录 保留 重新 浸润 准备 回收 回收 确保 片段 进行 曝光 确定 DNA 切除 变性 回收 CDNA 进行 容易 变性 回收 CDNA 透析 尿素 乙醇 沉淀 ;而 直接 PCR

@ 2D 电泳 标记 相似

@ 定量 方面 DDPCR 技术 数据 现实 认为 包括 核酸 保护 16 ) 竞争 PCR (第 20 ) 定量 测定 基因 表达 变化

(FDD) KAA (RNAspectra kits) GenHunter 公司 购买

313

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

@ PCR 确认 差异 表达 DNA 回收 需要 进行 进行 进一步 鉴定 PCR 循环 参数 相同 矿物 琼脂 (2% ~3%) 电泳 鉴定

丙烯 酰胺 切片 通常 100pl 30 ~ 6Omin, ik BERET) AS a AE BA DNA 浸出 溶液 PCR, 模板 HET 问题 尝试 减少 浸泡 90'C 保温 10min。 操作 步骤 建议 煮沸 操作 常常 使 实际 模板 90C 保温 10min 减少 增加 引物 浓度 2 5 粉碎 回收 目的 DNA。 调节 变化 cDNA 进行 练习 利于 使 系统 流程

22.3 产物 : 预期 什么

改变 基因 差异 表达 。DDPCR 主要 优点 显示 细胞 裂解 转录 产物 。PCR 快速 灵敏 利于 检测 非常 转录 产物 重要 研究 进行 随后 鉴定 基因 差异 序列 基因 表达 差别 PCR 产物 形式 表现

典型 DDPCR 产生 50 800bp 产物 超过 1lkb ,DDPCR 产物 显现 它们 程度 丙烯 酰胺 顶部 底部 电泳 700~800bp 产物 通常 产物 800bp 信号 使 产物 清楚 方法 DNA 测序 常用 尤其 适用 混合 PCR 产物

明确 显示 数据 意义 结果 使 相同 引物 PCR 同一 进行 电泳 A PCR 产物 状态 B PCR 产物 电泳 按照 引物 使 顺序 排列 邻近 道中 22. 3 显示 排列 例子 排列 直接 比较 反应 产物 细胞 状态 A 状态 B 表达 相同 转录 产物 道中 观察 相同 产物 22. 1); 差异 表达 基因 序列 22. 2) 使 DNA 测序 48 齿 方便 使 同一 引物 样品 同一 《〈 2 细胞 样品 X1 引物 X24 引物 ) PCR 显示 调节 序列 需要 标记 选中 标准 标记

22.3 差异 显示 PCR 策略

EREIITEEFITINRENESYIIECIEEIT

状态 A 状态 A 4 状态 B 状态 A 状态 B

相同 策略

aon Nw -— an >

3 3

Hi ATA) 3 Maal 24: fh) PCR 产物 道中 直接 比较 它们 cDNA 产物 道中 相同 细胞 转录 序列 道中 强度 差别

道中 完全 缺失 表示 特异 基因 差异 调节 DNA 测序 具有 48 允许 细胞 样品 样品

*。 314

22 mRNA 差异 显示

ooo B

i 切割 差异 表达 2 nmr

mRNA 3 uv 4 AAII I= 5

1 1 2 2 cDNA 3 3 4 4 5 使 | (10 ) PCR. 1 JCCCOCOCCCOCCCCX 1 2 2 PCR CCCCccccceccx 3 4 eccocccccccx 4

22.1 mRNA 差异 显示 方法 使 相同 引物 细胞 产生 转录 产物 相同 PCR 产物 样品 PCR 产物 相应 基因 差异 转录

22.2 信使 RNA (mRNA) 差异 显示 差异 显示 PCR (DDPCR) 产物 电泳 显影 典型 结果 邻近 道中 相同 转录 基因 道中 显示 差异 表达 序列 作为 进一步 研究 注意 产物 信号 强度 直接 反映 相应 转录 产物 相对

差异 显示 RNA 通常 - 生物 材料 制备 RNA,, 方法 非常 合适 试剂 细胞 mRNA 剪接 hnRNA。 ,PCR 产物 测序 结果 显示 序列 序列 同一 转录 产物 CDNA 同一 显示 特定 转录 相同 转录 产生 cDNA。

反应 ) cDNA 找到 互补 支持 PCR

现象 正好 显示 方法 使 任何 转录 产物 ”315

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

22.4 €$2%24: mRNA Z $ 2S.

进行 mRNA 差异 显示 实验 方案 自己 策略 。GenHunter DDPCR 产品 RNAimage 系统 必要 引物 进行 实验 试剂 方法 使 DDPCR 引物 方法 系统 详尽 方法 整个 流程 暂时 降低 灵敏

22.4.1 cDNA 合成

DO 确保 合成 cDNA RNA 质量 检查 清晰 28S 18S 核糖 RNA (rRNA) 18SrRNA FHA 少量 弥散 进行 反应 RNA 溶解 稀释 浓度 100ng/ul, 使 RNA 乙醇 沉淀 重新 溶解

@ 制备 cDNA 合成 混合 18 反应 ):

38. Onl 10 合成 缓冲 (100mmol/L Tris, 500mmol/L KCl, pH 8. 3)

76. Onl 25mmol/L MgCl,

9. 5yl 10mmol/L dNTP 混合 19.0npl RNA 抑制 (SOU/pD 13.3p1 ok

15.2pl AMV

注意 ”所 体积 取决 数量 反应 重复 数量 相应

@) 微量 离心 样品 方便 A 细胞 RNA 样品 Al A9,,B 细胞 RNA 样品 Bl B9。 3. Onl 25umol/L 储存 引物 )

Al A9 3. Onl (300ng) A 细胞 样品 RNA, B1 B9 3. Oul (300ng) B 细胞 样品 RNA,

© 5. Onl DEPC

© 70C 10min,

O 短暂 离心 样品 集中

9. 0pl cDNA 合成 混合 @ )。

© 42C lh SA cDNA.

ERK MMLV 适用 合成 cDNA。 使 MMLV ,37"C 保温 Lh (应 使 MMLYV 反应 缓冲 )

@ 95C 5min 使 马上 使 cDNA 样品 保存 cDNA 样品 离心 集中 储存 80C ,

注意 使 影响 实验 结果 合成 CDNA 储存 影响 稳定 22.4.2 通过 PCR cDNA

CDNA 合成 结束 直接 PCR 许多 316

22 mRNA 差异 显示

引物 进行 PCR 反应 同时 引物 进行 操作 合理 合成 cDNA 反应 选取 样品 正确 吸取 溶液 体积 重要 放射 显影 作为 检测 方法 反应 混合 必须 包括 Le? P| dCTP(10mCi/ml) [a-*°S]dATP.

@ 配制 DDPCR 反应 混合 进行 48 反应 ) :

100.01 10XPCR 缓冲 (无 MgCl: )

120. Ol 25mmol/L MgCl,

5. Onl [35S ]dATP(10 mCi/ml) 10. Ol 500umol/L dNTP 10. Onl Taq RG

361.0n1 = DEPC

注意 ”应 配制 体积 Tad 聚合 放射 标记 混合 体积 cDNA 合成 反应 数量 进行 调整 混合 适当 储存 20YC

注意 2 反应 MgCl, 浓度 mmol/L。

注意 3 450bp PCR 产物 ,dNTP 浓度 5umol/L 增加 15pmol/L.

@ 108] 下游 引物 cDNA 合成 反应 使 相同 引物 ) 反应 混合

G@) 反应 混合 反应 A 细胞 EDNA, 细胞 cDNA,

反应 混合 A Aah A BAHAY CDNA 合成 反应 使 含有 A 细胞 细胞 cDNA.

© 24 微量 反应 15pl LRO~OABAN A、B

© 反应 Syl 引物 引物 )

OQ 短暂 离心 集中

使 推荐 使 ) 反应 20nl 矿物 否则

@) PHAR: 94°C 3min 94°C 30s 40°C asf 循环 Tae 60s 726 5min 4°C co

22.4.3 PCR 产物

疑问 PCR 产物 方法 使 PAGE 方法 进行 PEAR TA Ms RR BEI CTR) 电泳 情况 变性 使 C1) 步骤 : 初步 确定 DDPCR 样品 相对 效率 反应 1 X Tris- - 317 «

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

-EDTA (TBE) 缓冲 1 X Tris- - EDTA(TAE) 缓冲 进行 3% 然后 SYBR 绿 、SYBR 染色 100V 电泳 20min, M Ee Be hiv He WA B] DDPCR 产物 (Al 22. 3) 任何 东西 意味 反应 效率 曝光 荧光 染料 染色 虽然 灵敏 反应 往往 显示

@ 3.0g 琼脂 105 ml 1XTAE 22.3 差异 显示 PCR。 溶化 12cmX 14cm 电泳 EB 染色 6 样品 进行 3%

琼脂 1kg/ ml EB) 电泳。 当心 ”这 浓度 琼脂 初步 判定 反应 效率 值得。 全景 注意 即使 使 灵敏 方法

Q 浓度 使 冷却 使 染色 直接 20p] 10mg/ml EB 使 SYBR SYBR 绿 染料 进行 SYBR A.

@ DDPCR BP Spl 样品 1ml 缓冲 吸取 方便 缓冲 5pl DDPCR 样品 5~10pl 7k.

@ 100V 电压 电泳 染料 2~3cm,

© 含有 EB 直接 紫外 观察 使 SYBR RI AY, HERE RE 浸没 2XSYBR 绿 1XTAE 缓冲 ,15min 观察 增强 微弱 进行 拍照

当心 ”使 紫外 畸变 荧光 染料 放射 物质 安全

(2) 变性 酰胺 电泳

制备 变性 酰胺 丙烯 酰胺 神经 实验 正确 试剂 否则 购买 预制 含有 适用 电泳 装置 规格 使 6% 丙烯 酰胺 1XTBE 电泳

丙烯 酰胺 DDPCR 产物 通常 表现 道中 变性 丙烯 酰胺

O 带好 手套 饮水 冲洗 始终 手套 聚合 健康

Q) 电泳 装置

@ 20~30min,

® DDPCR 反应 Opel) 离心 10nl 缓冲 (0.2% Mik; 10mmol/L EDTA, pH8.0; 20% Ficoll) 10 pl 样品 储存 80C 备用

@ 缓冲 混合 样品 Spl

© 超过 50 60W 进行 电泳

318 .

观察 样品 差别

22 mRNA 差异 显示

@ 电泳 取出 Whatman 滤纸 ,80C 2h。 甲醇 -醋酸 固定

当心 牢记 DDPCR 含有 放射 污染 电泳 缓冲 污染 设备 试剂

放射 显影

注意 ”最 X 线 使 切割 损坏 保留

© 冲洗 片子 差异 表达 序列 存在

注意 ”在 技术 目的 鉴定 费时 质量 进行 数字 挑选 那些 清楚 存在 样品 样品 缺少 差别 存在 5 诱导 抑制

22.5 FRA: EF EaLGZWHOE £ ho H #

正如 建议 使 变性 DDPCR 结果 传统 变性 变性 效率 变性 甚至 原因 包括 : ODNA ;,@) Taa 聚合 PCR 产物 3 GEA A)98。 显影 复杂 回收 困难

© 依据 滤纸 ) 切割 目的 离心 100nl

@ 室温 放置 30min ,90C 10min, 离心 使 滤纸 集中

G@) 转移 离心 含有 DNA。

@ 使 相同

25.0ul ”浸出 DNA (第 @@ )

5. Onl 10X PCR 缓冲 MgCl. )

6. Onl 25mmol/L MgCl,

5. Onl 500unmol/L dNTP

5. Onl 2umol/L 引物 OK 25mol/L 储备 稀释 )

5. Onl 2umol/L -上游 引物

1. Opl Taq RAH (SU/pD

注意 困难 MgCl, 浓度 调整 1. 5mmol/L, 引物 浓度 增加 lpmol/L, IFA 循环 增加 40 循环

@@ 使 初生 产物 相同 浸出 DNA。

94°C 3min

循环 参数 94°C aon) 40°C 60s $30 循环 126 60s)

延伸 TAC 5min

保存 4c

@ 单独 使 具有 校对 活性 稳定 聚合 Tad 聚合 共同 使 3 末端 单个 “3349

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

© 结束 10ml 样品 2 缓冲 混合 2.5% BRAG BE BE Ie (1XTBE 1XTAE) 标准 (il Promega PCR Marker, Cat. No. G-3161) 同时 电泳 @ SYBR 绿 EB 染色 拍照

22.6 永和 回收 表达 序列

鉴定 差异 调节 基因 重要 结果 DDPCR 产物 同一 产物 进行 Northern 纯化 DDPCR 产物 检测 罕见 使 单一 常常 “隐藏 ”着 cDNA (Callard , 1994) 末端 序列 识别 序列 相同 离开 确保 随后 数据

进行 Northern 序列 配对 支持 转录 cDNA RNA。 RNA 杂交 DDPCR 产物 进行 验证 Northern 使 细胞 RNA 作为 材料 观察 同一 剪接 体形

DDPCR 产物 标准 方法 讨论 直接 序列 克隆 适用 载体 接连 简单 方法 情况 使 DDPCR 序列 ) Northern 相同 进行 DDPCR 实验 RNA 进行 标准 变性 印迹 尼龙 12 ) 。DDPCR 产物 进行 标记 《放射 标记 荧光 标记 ) Northern 方法 基于 DDPCR 产生 cDNA 产生 cDNA RNA cDNA, E114 RNA 转录 检测 显示 杂交 道上 强度 信号 (如 状态 A RNA), 邻近 状态 B RNA) 杂交 信号 差异 调节 序列 非常

使 方法 许多 通过 PCR 获得 cDNA, RNA 转录 产物 传统 Northern 使 poly(A)+

因此 俘获 CDNA ? Northern 显现 信号 X 射线 片上 含有 杂交 cDNA 尼龙 相应 尼龙 含有 固定 RNA 通过 结合 cDNA 尼龙 离心 100ml ,95C 5min, cDNA 滤纸 制备 PCR 混合 , @ 合成 cDNA ; 单一 产物 进一步 鉴定 方法 Northern 印迹 (Zhang 等, 1996) 方法 混合 序列 确定 纯化 cDNA

22.7 PCR 产物 克隆

任何 克隆 PCR 产物 方法 通常 同样 适用 片段 载体 DDPCR 产生 混合 CDNA (同样 序列 ) 方法 "320

22 mRNA 差异 显示

克隆 方法 TA 克隆 方法 A 尾巴 PCR 产物 尾巴 连接 ;, TOPO 克隆 DNA 拓扑 “再 结合 ”活性 快速 PCR 片段 载体 相连 19 HE).

PCR 产物 克隆 虽然 绝对 必要 利于 测序 片段 载体 转化 选择 培养 单个 细菌 菌落 含有 插入 片段 鉴定 菌落 转化 牙签 随机 挑选 10 情况 ) 菌落 接种 琼脂 平板 保存 PCR 反应 混合 反应 混合 含有 产生 DDPCR 产物 相同 进行 琼脂 插入 片段 相同

22.8 验证

DDPCR 进行 引物 进行 反应 反应 使 那些 反应 显示 差别 引物 方法 程度 利于 消除 反应 实验 使 实验 重复 结果 实验 结果 完全 因为 : 细胞 培养 完全 重复 表达 依赖 细胞 密度 ); @ 样本 完全 生化 许多 相似 许多 使 同一 样本 反应 重复 RNA RNA 使 RNA it 进行 离心 cDNA 模板 完成 DDPCR 步骤 同一 同一 RNA 样品 精确 代表 细胞 相同 生化 状态

目前 方法 判断 使 差异 表达 差异 表达 序列 细胞 变化 Northern 12 ) 核酸 保护 (RPA) (第 16 BE). KU 实验 17 ) 构象 (SSCP) (Orita ,1989) 。SSCP 简单 原理 DNA 丙烯 酰胺 依赖 方法 综述 实验 流程 Fujita #l Silver (1995),

22.9 进一步 鉴定

Northern 核酸 保护 (RPA) 实验 进一步 鉴定 纯化 CDNA 基因 转录 情况 方法 虽然 观察 基因 表达 角度 鉴定 基因 DNA 序列 克隆 轻而易举 考虑 DDPCR 产生 序列 相对 比较 花费 精力 建立 限制 限制

DDPCR 引物 标准 测序 方便 DDPCR 产物 进行 使 引物 引物 5 T3 SP6 测序 启动 序列 引物 设计 限制 特别 方便 引物 A B 原来 A B 了,DDPCR 产物 直接 测序 (Reeves “, 1995; Wang Feuerstein, 1995),

- 321 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

差异 调节 序列 清楚 细胞 基因 调控 提供 DNA 序列 重复 作为 核酸 需要 [ce-32P] dNTP, 进行 15 循环 结束 72 延伸 5min 尚未 测定 RNA 样品 进行 基因 表达 筛选 基因 调节 ;,

22.10 £¥ £508

事实 实验 操作 引起 细胞 生化 改变 模型 适用 DDPCR 技术 研究 。mRNA 差异 显示 mRNA 进行 排比 鉴定 基因 研究 基因 调控 例子 )

CD 培养 细胞 药理 浓度 生长 因子 药物 影响

Q@ 静止 细胞 细胞 生长 培养 细胞 比较 |

@ 蔬菜 基因 功能 季节 变化

®

© 诊断 指标

© 功能 研究

O 基因

@ 辨别 转录 调控 转录 调控 序列 CRA RNA 制备 方法 参见 3 BPA 3.2).

差异 显示 方法 代表 研究 参见 Sager (1993), Zimmerman Schultz (1994), Zhang (1996 )

22.11 mRNA 解决

许多 使 DDPCR 方法 研究 方法 主要 缺陷 反应 重复 许多 解释 方法 特点 引物 质量 非常 敏感 HPLC 纯化 引物 才能 参与 反应 需要 进行 质量 控制 使 方法 研究 购买 DDPCR 试剂 合成 优化 均一 质量 引物 达到

方法 特点 DDPCR 反应 浓度 非常 灵敏 合成 cDNA 进行 PCR 使 反应 混合 关键 se, 利于 减少 问题 程度 提高 实验 重复 效率

(1) 必须

® 质量 RNA

使 RNA BERR

© 使 盐酸 作为 裂解 缓冲

酸性 .。

@ 使 NEF-40 裂解 使 方法 纯化 RNA 进行 DDPCR, 想得到 重复 数据 需要 熟练 技能 .

. 322 *

22 mRNA 差异 显示

缓冲 进行 沉淀

样品 RNase DNase

使 DEPC 配制 70%% 洗涤 RNA 沉淀 8。 恰当 储存 纯化 RNA.e @ cDNA PCR

cDNA 反应 使 相同 RNA (200~300ng).

使 RNase 活性 反应 帮助

避免 使 依赖 Mn? *

永远 使 cDNA 反应 混合

永远 使 PCR 反应 混合

(2) 问题 © 严重 弥散 现象

优化 Mg2# ) 降低 0. Immol/L。

减少 PCR 循环 30 循环

减少 反应 使

稍稍 增加 退火 温度

注意 ”在 情况 ,1 5 循环 使 40 退火 ,6 40 循环 使 45\C 退 减少 弥散 现象

操作 减少 数量 25% ~30%,

@ 产物 产生

检查 RNA。

RNA 抑制 RNasin),

检验 RT PCR

核对 反应 确认 充分 混合

检查 PCR 循环 参数 @ 低产

© 样品 裂解 完全

检查 RNA 沉淀 完全 溶解

© 测定 Azso/Azse 比值 65 表明 蛋白 物质 污染 检查 RNA

© 动物 取出 样品 没有 立即 冰冻

纯化 RNA 储存 20C, 80TC

使 溶液 反应 RNase

@ DNA

© DNase DNA 污染

@ 数据 重复

使 2007l 反应 使 反应 需要 调整 PCR 循环 参数 采用 启动 PCR ( 19 )。

© 含有 阳离子 dNTP 结合 破坏 DNA 合成 PCR 进行 @ DDPCR 方法 降解 RNA PCR 基础 方法

° 323

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

细胞 样品 配制 单个 体积 混合 反应

使 Tn 尽量 接近

使 合成 PCR 产物 Tagt+ Pwo).

使 矿物 使 循环

RNA 使 方法 情况

同一 RNA 情况

© 检查 细胞 状态 状态 周期 同时 相对 相对 衰老 ), 重复

使 引物 引物 导致 问题

检查 使 反应 混合

同一 循环 进行 反应 优化 运行 仅仅 同样 仪器 )

(3) 综合 建议

变性 步骤

变性 温度 90~92°C.

延伸 温度 68'C

循环 延伸 适当 〈5 20s/ )

精确 取样 重复 结果 开始 实验 微量 取样 重新 备用 取样 取样 换取 避免 污染

mRNA 差异 显示 技术 RNA 实际 非常 灵敏 RT-PCR ", 反应 材料 适得其反 200 300ng RNA)

许多 PCR 相关 技术 ,mRNA 差异 显示 材料 质量 特别 FA MS Be ob EY RNA 质量

购买 含有 选择 引物 试剂 订购 自己 制备 引物

使 硅烷 微量 离心 利于 操作 减少 损失 因为 cDNA CR 产物 ) 体操 附录 8)

22.12 & 4

Bauer, D., Muller, H., Reich, J., Riedel, H., Ahrenkiel, V., Warthoe, P., and Strauss, M. (1993). Identification of differentially expressed mRNA species by an improved display technique (DDRT-PCR). Nucleic Acids Res. 21, 4272.

Callard, D., Lescure, B., and Mazzolini, L. (1994). A method for the elimination of false positives by the mRNA differential display technique. Bio Techniques 16, 1096.

Fujita, K., and Silver, J. (1995). Single-strand Conformational Polymorphism. In “PCR Primer: A Laboratory Manual” (C. W. Dieffenbach and G. S. Dveksler, Eds.). Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY. pp. 249-255.

Liang, P., Averboukh, L., Keyomarsi, K., Sager, R., and Pardee, A. B. (1992). Differential display and cloning of messenger RNAs from human breast cancer versus mammary epithelial cells. Cancer Res. 52, 6966.

Liang, P., Averboukh, L., and Pardee, 4. B. (1993). Distribution and cloning of eukaryotic mRNAs by means of differential display: Refinements and optimization. Nucleic Acids Res. 21, 3269.

- 324 .

22 mRNA 差异 显示

Liang, P, Bauer, D., Averboukh, L., Warthoe, P, Rohrwild, M., Muller, H., Strauss, M., and Pardee, A. B. (1995). Analysis of altered gene expression by differential display. Methods Enzymol. 254, 304.

Liang, P., and Pardee, A. B. (1992). Differential display of eukaryotic messenger RNA by means of the polymerase chain reaction. Science 257, 967.

Liang, P., Zhu, W., Zhang, X., Guo, Z., O'Connell, R. P., Averboukh, L., Wang, F., and Pardee, A. B. (1994). Differential display using one-base anchored oligo-dT primers. Nucleic Acids Res. 22, 5763.

Lohman, J., Schickle, H., and Bosch, T. (1995). REN Display, a rapid and efficient method for nonradioactive differential display and mRNA isolation. Bio Techniques 18, 200. McClelland, M., and Welsh, J. (1994). RNA fingerprinting by arbitrarily primed PCR.

PCR Methods Applic. 4, S66.

Mou, L., Miller, H., Li, J., Wang, E., and Chalifour, L. (1994). Improvements to the dif- ferential display method for gene analysis. Biophys. Res. Commun. 199, 564.

Orita, M., Suzuki, Y., Sekiya, T., and Hayashi, K. (1989). Rapid and sensitive detection of point mutations and DNA polymorphisms using the polymerase chain reaction. Genomics 5, 874.

Reeves, S. A., Rubio, M., and Louis, D. N. (1995). General method for PCR amplification and direct sequencing of mRNA differential display products. Bio Techniques 18, 18. Sager, R., Anisowicz, A., Neveu, M., Liang, P., and Sotiropoulou, G. (1993). Identification by differential display of alpha 6 integrin as a candidate tumor suppressor gene. FASEB

J. 7, 964.

Wang, X., and Feuerstein, G. Z. (1995). Direct sequencing of DNA isolated from mRNA by differential display. Bio Techniques 18, 448.

Welsh, J., Chada, K., Dalal, S., Cheng, R., Ralph, D., and McClelland, M. (1992). Arbitrarily primed PCR fingerprinting of RNA. Nucleic Acids Res. 20, 4965.

Zhang, H., Zhang, R., and Liang, P. (1996). Differential screening of gene expression dif- ference enriched by differential display. Nucleic Acids Res. 24, 2454.

Zhao, S., Ooi, S. L., and Pardee, A. B. (1995). New primer strategy improves precision of differential display PCR. Bio Techniques 18, 842.

Zimmermann, J. W., and Schultz, R. M. (1994). Analysis of gene expression in the pre- implantation mouse embryo: Use of mRNA differential display. Proc. Natl. Acad. Sci. 91, 5456.

(Ki; )

“25。

23 表达

23.1 基本 原理

许多 研究 渴望 快速 筛选 样品 基因 表达 方法 方法 包括 RNA 印迹 核酸 保护 〈RTI- PCR), 价值 方法 基础 筛选 许多 开展 批量 表达 研究 研究 提供 细胞 功能 细胞 变化 功能 改变 信息 科学 疑问 接受 阵列 阵列 普遍 作为 样品 平行 比较 筛选 CTS) 基础 错综复杂 自动 效能 进一步 增强

23.2 REM AH ZS

阵列 生物 芯片 常见 lin X 3in(lin=0. 0254m) 尼龙 永久 非常 单个 基因 序列 (Fodor ,1991; Fodor 1993)。 阵列 原先 生物 样品 信使 RNACmRNA) 表达 开发 〈Sche- na ,1995)。 现在 拷贝 (Pollack ,1999) 开发 阵列 基础 技术 蛋白 (Fodor ,1993; WL Haab, 2000 综述 ) GH 蛋白 ) 抗体 (Ab)

现在 3 阵列 基本 格式 平台 〈25 ) BERATED, AH DNA (cDNA) (60~70 RFR) 认为 平台 比较 灵敏 25 允许 序列 Tm 阵列 超过 70 灵敏 增加 增加 合成 增加 差错 概率 增加 《〈 Barrett Kawasaki,2003 综述 )

DNA 沉积 阵列 表面 作用 实验 室内 制作 阵列 阵列 定制 实验 制造 制作 主要 关注 质量 控制 (QC) PAR, BRERA 阵列 阵列 表面 直接 合成 合成 沉积 列表 注意 使 费力 PCR 产生 cDNA 阵列 序列 交叉 杂交 严重 问题 基因 序列 RefSeq, Ensembl, RIKEN HUCO。 数据 序列 熟知 充分

326 -

23 基因 表达

包含 功能 DNA 序列

单一 基因 序列 制造 需要 专门 设备 革新 技术 合成 方法 DNA 特性 购买 费用 实验 选择 自己 制备 阵列 容易 销售 渠道 氨基 硅烷 )。 销售 cDNA MEK 序列 实验 节省 实验 购买 额外 费用 玻璃 尼龙 反复 使 作者 实验 反复 使 ?2P 测试 尼龙 荧光 玻璃 阵列 阵列 表现 收集 细胞 生化 定性 信息 阵列 速成 研究 手段 主流 超出 预料 基因 计划 完成 获得 相当 信息

代表 单一 序列 阵列 普及 利于 同时 方法 普及 生物 技术 供应 销售 RNA 印迹 (Northern 印迹 ) : RNA 印迹 准备 核酸 杂交 意义 阵列 技术 杂交 赋予 鉴定 架构 细胞 基因 表达

系列 )。 广 范围 阵列 设计 目的 使 研究 范围 设计 实验

样品 照样 ) 标记 cDNA 体积 杂交 缓冲 进行 探测 常见 携带 荧光 染料 标记 CDNA cy3- 尿 -5 -三 磷酸 (Cy3) cy5- 尿 -5 -三 磷酸 CCy5) (Amersham 生物 科学 公司 产品 ) 激光 扫描 绿色 红色 荧光 染料 标记 cDNA Cy3 标记 样品 cDNA Cy5 标记 合用 杂交 Cy3 标记 cDNA Cy5 标记 cDNA 杂交 同一 同时 黄色 阵列 2 染料 荧光 提供 转录 产物 变通 ?3P 标记 cDNA 尼龙 阵列 ?2 P 3P 标记 cDNA 染料 标记 才能 进行 颜色 检测

23.3 BGI HEE Z

显现 基因 表达 直观 明显 优点 单个 杂交 实验 基因 基因 阵列 基因 结果 使 数据 特定 疾病 生发 基因 设计 实验 行为 问题 阐明 基因 问题 阵列 提供 批量 比较 基因 手段 23. 1 )

传统 生物 方法 同时 提供 调和 23. 1) 阵列 显著 优点 庞大 数据 存档 具有 速度 效率 具有 直接 鉴定 表达 波动 基因 功能 差异 显示 阵列 差异 表达 序列 需要 克隆 测序 序列 检定 精确 序列

¢ 327 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

RNA RNA 2 评估 纯度 完整

Ca | | | | cos =) D>

防止 降解 cDNA 标记 荧光 染料

杂交 阵列

@OOO800O eoele! Jolexole) | 杂交 阵列 序列 杂交 杂交 结果 Cy5 =

Cy3 = 绿 = =

23. 1 阵列 主要 又。 互补 DNA (cDNA) WAR. RIC AUER LA. 结合 荧光 检测 放射 显影 研究 样品 基因 表达 信息 “|

23.1 聚合 (PCR) 杂交 比较

基因 ,是 目标

排比 2 细胞 容易

序列

检测 选项 ”放射 显影 荧光 检测 荧光 检测 放射 显影 检测 定性

需要 昂贵 芯片 | 需要 实时 PCR WL tie

设备 aN PRES SH 阵列 ,需要 软件 SYBR 绿 ,需要 | 专门 设备

© 任意 单位

@ cRNA, 互补 RNA。

比较 阵列 cDNA 文库 ? 阵列 任何 生理 生化 变化 细胞 简单 印象 生物 EDNA。 阵列 序列 理学 意义 关系 确定 注意 重要 ,cDNA 文库 含有

没有 序列 序列 正好 代表 描述 功能 基因 328

23

技术 使 当代 技术 互补 兼容 技术 包括 实时 PCR, RNA Fit (RNAi) 转基因 研究 阵列 技术 取代 盛誉 生物 方法 完善 科学 研究 手段

23.4 什么

阵列 肯定 方便 基因 技术 通行 方法 认识 方法 方法 固有 阵列 阵列 基因 序列 阵列 基因 工具 阵列 差别 使 基因 表达 预先 限制

阵列 数据 表明 基因 表达 差异 随后 研究 基因 行为 通过 实时 PCR 定量 阵列 限于 定性 信息 列表 cDNA HERE EN ERR. ERAT AR 阵列 基因 序列 正信 表明 特定 基因 转录 阵列 识别 剪接 转录 转录 产物 通过 RNA 印迹 阐明 转录 通过 核酸 保护 互补 DNA 5 快速 〈5 RACE) 检测 保证 检测 费用 非常 许多 情况 样品 1

含糊 阵列 突然 数据 平行 比较 清楚 肯定 数据 完美 阵列 自身 排除 污染 实验 技术 干扰 问题 支原体 复合 污染 细胞 生物 难题 细胞 培养 RNA, 结果 改变 〈Miller ,2003)

限量 RNA 除了 样品 实际 使 阵列 ,, 尤其 所、 细胞 显微镜 少数 细胞 情况 尝试 合成 方法 RNA 线性 8。 途径 T7 SP6 启动 使 RNA 转化 EDNA。 使 CDNA 体外 进行 转录 产生 转化 cDNA RNA。 途径 标记 扭曲 样品 转录 产物 关系

23.5 主要 典型 23. 2) 基本 实施 步骤 23. 2 展示 典型 实例 标记 方法 方法 RNA 参数 实验 选择 改变 D 获得 DNA 供应 直接 使

@ PCR 导致 模板 序列 指数 扭曲 复杂 研究 样品 真实 差别 转录 ,mRNA 转化 cDNA 转录 达到 RNA 线性 保留 转录 真实 差别 使 需要 2 轮转 产生 适当 质量 标记 RNA, 值得

329 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

-M ”肿瘤 坏死 因子 -1 SRL 肿瘤 坏死 因子 -1 (b) " Leak =.= = * mS > - = yas ‘’ - —— ou

# mn <* ww 2 or a ye orn [aas y - & &,. N- 黏着 蛋白 IGFBP 4 14 波形 蛋白 N- 黏着 蛋白 IGFBP4 14 ”波形 蛋白

23.2 ”小 差异 表达 表示 正常 细胞 Ca) 肿瘤 细胞 Cb). fe 互补 DNACcDNA) 正常 肿瘤 信使 RNAC(mRNA) ?P 合成 杂交 严格 洗涤 曝光 基因 印迹

cDNA 信号 强度 直接 相关 基因 表达 随后 RNA 印迹 验证 承蒙 布朗 病理 实验 医学 A. Kane 博士 提供

直接 研究 生物 材料 商品 实验 自己 打印

© 质量 RNA。 质量 RNA 方法 评估 5 8 阵列 RNA, Azxto/Azso 1.8.

@ cDNA 合成 RNA 固有 稳定 实验 mRNA 〈( “未 样品 ") 转化 EDNA。 反复 使 携带 荧光 Cn dCTP) ,RNA 倾向 Cy3 光标 方法 解决 问题 方法 采用 dUTP 衍生 5-(3- 丙烯 )-2'- 尿 -5 - 磷酸 通常 丙烯 标记 cDNA 合成 混合 dATP, dCTP, dGTP -dUTP。 反应 表明 〈Hughes ,2001)。 随后 反应 纯化 cDNA 连接 标记 程度 通过 散射 评定 散射 密集 标记

染料 连接 合成 cDNA et iccteen. mun 4y BU AE ti AS AA as Be KF RR 反应 使 染料 直接 CDNA 连接

© Cy 标记 纯化 非常 重要 步骤 标记 介质 清除 反应 染料 步骤 染料 清除 彻底 阵列 背景 非常 什么 阵列 重复 cDNA 质量 标记 效率 原因 质量 CDNA 质量 RNA。 除去 标记 反应 物质 非常

© 阵列 杂交 。cDNA 直接 暴露 阵列 体积 杂交 缓冲 液体 利于 提高 浓度 利于 杂交 动力 实施 规定 严格 进行

G@ 阵列 数据 使 荧光 情况 扫描 杂交 显现

。330 -

23 基因 表达

影像 影像 放射 同位 胶片 捕捉 影像 确定 数据 生物 意义 关联 取决

23.6 RNA

通用 RNA (universal reference RNA,URR) 普遍 试验 使 通用 KE RNA 平常 RNA 立刻 显而易见 容易 疾病 进行 研究 那样 RNA 质量 非常 RNA。 合并 代表 : @ 难以 ; @ RNA RNA 必须 通过 严格 质量 控制 (QC) 实验 保证 Arco /A2 KF 1.8, 基因 DNA 制剂 电泳 28S rRNA : 18S rRNA 荧光 比值 2 : 1。 质量 控制 绝对 需要 标准 重要 RNA 功能 描述 知道 基因 覆盖 杂交 基因 比较 研究 目的 重要 覆盖 范围 86%~99%,

进行 实验 2 方式

@ 设计 1 样品 2 标记 同一 Cy3 绿 ) 标记 样品 1, Cy5 (红色 ) 标记 样品 2, 同一 阵列 杂交 4 样品 必须 进行 6 杂交, 包括

样品 1 样品 2 样品 2 样品 3 样品 1 样品 3 样品 2 样品 4 样品 1 样品 4 样品 3 样品 4

进行 样品 1/ 样品 2 比值 6 阵列 同样

@ 通用 RNA 设计 途径 减少 数量 标记 样品 Cy3 标记 )〈 样品 1 样品 4) 通用 RNA“〈 Cy5 tric) 杂交 方式 需要 4 杂交 样品 1/ URR, 样品 2/ URR, 样品 3/ URR, 样品 4/ URR。 RNA 设计 优点 主要 单个 样品 直接 比较 样品 单个 共同 实验 实验 9。 RNA 实验 专用 方案 常常 直接 比较 通用 RNA 工业 规模 制造 非常 包装 同属 研究 相距 合作 实验 使

23.7 B

阵列 技术 商品 自生 物化 半导体 工业 联姻 工业 科学 价值 数量 〈Affymetrix) 增加 包括 Agilent. Amersham 若干

@ 比较 密切 相关 若干 套数 极力 推荐 使 同一 阵列

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

难以 计数 任何 研究 基因 表达 利用 阵列 十, 因为 印迹 芯片 序列 缩影 ,芯片 复制 非常 昂贵 据点 缺失 常常 使 统计 问题 阵列 相关 检测 实时 PCR 唯一 方法 非常 准确 量化 阵列 数据 范围 基因 表达 变化 PCR 目前 唯一 验证 阵列 数据 方法 实时 PCR 准确 揭示 找到 变化 基因 调节 幅度 程度 受到 调节 方法 互补

显然 疾病 现象 基因 领域 细胞 药物 基础 研究 研究 实验 阵列 技术 兴趣 阵列 投入 临床 使

重要 ,RNA 往往 提供 ) Sh. SARABRAARE, 翻译 修饰 蛋白 生产 白质 芯片 开发 细胞 生产 什么 蛋白 白质 什么 (Ab) 阵列 构成 方法 蛋白 同时 表达 知道 表达 DNA 阵列 产生 数据 样品 特殊 蛋白 相对 仅仅 回答 抗体 阵列 印迹 阵列 克隆 抗体 抗体 代表 特定 例如 肿瘤 通常 表示 许多 整个 细胞 定位 目前 报道 方法 灵敏 达到 10pg/ml

2 8 -区

Barrett, J. C., and Kawasaki, E. S. (2003). Microarrays: The use of oligonucleotides and cDNA for the analysis of gene expression. Drug Discovery Today 8, 134.

Fodor, S. P., Rava, R. P, Huang, X. C., Pease, A. C., Holmes, C. P., and Adams, C. L. (1993). Multiplexed biochemical assays with biological chips. Nature 364, 555.

Fodor, S. P., Read, J. L., Pirrung, M. C., Stryer, L., Lu, A. T., and Solas, D. (1991). Light- directed, spatially addressable parallel chemical synthesis. Science 251, 767.

Haab, B. B. (2001). Advances in protein microarray technology for protein expression and interaction profiling. Curr. Opin. Drug Discov. Dev. 4, 116.

Hughes, T. R., Mao, M., Jones, A. R., Burchard, J, Marton, M. J., Shannon, K. W, Lefkowitz, S. M., Ziman, M., Schelter, J. M., Meyer, M. R., Kobayashi, S., Davis, C., Dai, H., He, Y. D., Stephaniants, S. B., Cavet, G., Walker, W. L., West, A., Coffey, E., Shoemaker, D. D., Stoughton, R., Blanchard, A. P., Friend, S. H., and Linsley, P. S. (2001). Expression profiling using microarrays fabricated by an ink-jet oligonucleotide synthesizer. Nat. Biotech. 19, 342.

Miller, C. J. Kassem, H. S., Pepper, S. D., Hey, Y., Ward, T. H., and Margison, G. P. (2003). Mycoplasma infection significantly alters microarray gene expression profiles. BioTechniques 35, 812.

Pollack, J. R., Perou, C. M., Alizadeh, A. A., Eisen, M. B., Pergamenschikov, A., and Williams, C. (1999). Genome-wide analysis of DNA copy number changes using cDNA microarrays. Nat. Genet. 23, 41.

Schena, M., Shalon, D., Davis, R. W., and Brown, P. O. (1995). Quantitative monitoring of gene expression patterns with a complementary DNA microarray. Science 270, 467.

(AB RAKE; ) 332 -

246 RNA 目标

24.1 基本 原理

20 世纪 80 系列 关于 体外 DNA 合成 方法 文章 相继 (Saiki 1985; Mullis , 1986; Mullis Faloona,1987) 现在 聚合 〈pol- ymerase chain reaction, PCR) 方法 广 标记 PCR 引物 延伸 技术 羽翼 生物 工程 产业 革新 。PCR 技术 改变 生命 科学 研究 广阔 领域 方面 正面 推动 用。 法医学、 基础 研究 研究 染病 诊断 亲子 鉴定 达到 今天 精确 归功 PCR 技术 非凡 技术 诞生 利用 RNA (dsRNA) 抑制 特定 RNA 干扰 8 (RNA interference, RNAi) 技术 。RNAi FRA Be) EZR (Caenorhabditis elegans) (Fire ,1998) 系统 获得 哺乳 动物 细胞 系统 (Hammond ,2000; Elbashir ,2001a) 诞生 RNAi 方法 改进 显示 研究 PCR 影响 。RNAi 技术 Bi Pi VE EA ek BR 〈gene knockdown), 相关 转录 基因 沉默 〈postrtranscrip- tional gene silencing) (植物 )、 (cosuppression) ) 压抑 〈quel- ling) (BRA).

AKEES +P KRW RNAi 自然 现象 怪谈 (Napoli ¥, 1990; van der Krol ,1990) 许多 物种 存在 RNAi 生物 抵抗 病毒 损坏 宿主 基因 引起 灾害 手段 注意 “dsRNA 进入 细胞 立即 破坏 ”, 保护 基因 完整 方法 进化 。RNAIi 自然 参与 野生 mRNA 突变 mRNA 降解 作用 物体 翻译 调控 包括 细胞 揭示 调控 目前 RNAi DNA (Wessenegger ,1994; Llave ,2000 Merrett ,2000; Pélissier Wessenegger, 2000).

利用 RNAi 细胞 生物 体内 基因 表达 影响 进行 研究 遗传 〈re- verse genetics) 目标 确认 蛋白质 细胞 表达 造成 染病 治疗 蛋白 引起 疾病 治疗 意义 深远

@ RNA 专利 注册 操作 操作 商业 华盛顿 卡耐基 研究 许可 方式 : 管理 ,Carnegie Institution of Washington, 1530 P Street,N. W. , Washington, DC 20005, 电话 202-939-1118。

° 333 -

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

FA. RNAi 主要 优势 基因 进行 研究

RNAi 现在 基础 研究 研究 主流 技术 功能 基因 研究 特有 现象 ,RNAi 现在 研究 动物 真菌 基因 表达 调控 优先 手段 RNAi 技术 培养 细胞 体内 模型 研究 范围 ”因此 受到 欢迎 培育 基因 动物 ,RNAi 技术 研究 目标 基因 功能 快捷 方法 ,RNAIi 沉默 目标 基因 方面 表现 精确 使 研究 开发 救生 药物 研究 平台 技术 帮助 基因 失调 联系 ,RNAi 阐述 因果 关系 。RNAi 技术 意义 重大 2002 享有 声誉 Science® “年 科技 ”。 针对 技术 专门 提供 相应 支持 服务 预制 RNA (short interfering RNA, siRNA) 324 tf 试剂 公司

24.2 26 RNAi 4

antisense RNA: JX RNA, 43 mRNA 序列 互补 RNA Ot RNA 稳定 dsRNA

argonaute: 保守 蛋白 通过 Dicer “RNA 诱导 沉默 复合 (RNA-induced silencing complex, RISC) 相互 结合 参与 RNAi 报道 指出 ar- gonaute 蛋白 通过 途径 RNAi 促进 作用 argonaute 细胞 作用 〈Carmell 4, 2002).

Dicer: 特异 核酸 dsRNA 切割 21~23bp 片段 CSiRNA)。 siRNA 片段 随后 RISC 结合 目标 mRNA “〈 沉默 mRNA) 互补 序列 杂交 重组 Dicer 商业 制品 。Dicer RNA (dsRNA) 短发 RNA (shRNA) fil TM siRNA。 shRNA WT mh miRNA,

dsRNA (double-stranded RNA): RNA。 含有 正义 RNA ARM RNA 核酸 Dicer WHIM siRNA,

ddRNAi (DNA-directed RNA interference); DNA 指导 RNA 干扰 RNA 聚合 哺乳 动物 细胞 产生 SIRNA 方法 方法 产生 SIRNA 结构 功能 体外 合成 siRNA

dsRNAi (double-stranded RNA interference); RNA 干扰 利用 dsRNA 通过 RNAi 途径 进行 基因 沉默

miRNA (microRNA): ft RNA。 21nt RNA, 降解 mRNA 《虽然 ) 方式 阻碍 特定 mRNA 翻译 (translational repression, MiPEREIE). miRNA 细胞 进程 基因 表达 进行 重要 短暂 调控 。miRNA Dicer 70 90nt )

PTGS (post-transcriptional gene silencing) : 转录 基因 沉默 描述 基因 表达 抑制 术语 描述 植物 细胞 表达 转录 因素 导致 基因 表达

$24 RNA 干扰 目标 基因 沉默

抑制 文献 PIGS 许多 研究 RNAi 同义词

RISC (RNA-induced silencing complex): RNA 诱导 沉默 复合 含有 argo- naute 蛋白 蛋白 构成 复合 Dicer 催化 产生 siRNA 片段 结合 siRNA 随后 RNA (mRNA, J RNAS) 进行 作为 降解 标志

RNAi (RNA interference) : RNA 自然 产生 SiRNA 基因 沉默 fil. KA EMA, RNAi dsRNA 诱导 PTGS.

shRNA (short hairpin RNA) : 短发 RNA。 正义 结构 (domains) 便 形成 配对 RNA 形成 典型 tRNA 8 正义 序列 构成 。shRNA Dicer Dicer WEAK.

siRNA (short interfering RNA): RNA。 片段 21 23bp RNA ,3 2 ) 突出

U6: RNA 聚合 启动 启动 装配 转录 载体 shRNA 体内 合成

24.3 RNAI

RNAi dsRNA 诱发 催化 途径 细胞 dsRNA 病毒 感染 诱导 转录 降解 dsRNA 途径 细胞 自发 产生 。RNAi 产生 破坏 mRNA 导致 特定 基因 降解

5 末端 mRNA 序列 形成 结构 抑制 翻译 观点 20 世纪 70 片段 DNA 抑制 基因 表达 〈Zamecnik iStephensen,1978) 体外 哺乳 动物 系统 RNA 显示 调控 基因 表达 (Nishikura Murray, 1987); 噬菌体 植物 (Green ,1986) 动物 (Knecht Loomis, 1987) 同样 调控 作用 RNA 构想 RNA 浓度 RNA 具有 细胞 毒性 体外 使 RNA 抑制 基因 表达 若干 RNA 同样 良好 特异 基因 表达 抑制 作用 (Guo Kemphues,1995)。 (Fire ,1998) RNA 效率 单独 使 正义 RNA RNA. 正义 RNA 引起 基因 沉默 因为 污染 RNA 形成 少量 RNA。 知道 RNA 具有 互补 基因

诱导 dsRNA 途径 排列 。RNAi 基本 历程 24.1), RNAi 涉及 主导 催化 Dicer 核酸 广 白质 核酸 dsRNA 消化 21 23bp、 3 核酸 突出 特征 siRNA (Zamore ,2000) ,sSiRNA 5 -磷酸 3-- OH 末端 。Dicer 氨基 螺旋 结构 RNase 结构 PAZ 结构 (来 PIWI 蛋白 、argonaute 蛋白 zwille 蛋白 ) 特异 识别 3 悬垂 RNA 结合 结构 (dsRNA-binding domain) 羧基 末端 RNA 导入 细胞 BA Dicer Dicer 体外 产生 siRNA, 些小

335 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

24.1 _ RNAi 过程 主要 步骤 结构 RNA Dicer siRNA。 RNA 诱导 沉默 复合 (RISC) BASS mRNA 破坏 伴随 造成 基因 表达

导入 细胞 siRNA RISC RISC 精确 作用 清楚 RISC 含有 argonaute HA. ME argo- naute 蛋白 Dicer 保守 PAZ 结构 argonaute 蛋白 PIWI 功能 清楚 。RISC ATP 依赖 使 siRNA 任何 SIRNA mRNA, 使 沉默 。siRNA mRNA 形成 使 mRNA BRR. RISC 短暂 形成 mRNA (Elbashir ,2001b) ,mRNA 进一步 降解 mRNA 细胞 翻译 任何 作用

RNAi 引发 基因 沉默 主要 方法 : OsiRNA; OshRNA; @ddRNAi。 方法 优点 缺点 24. 1) 方法 方法 RNAi 同一 实验 使 方法 决定 方法 实验 合适 途径 改变 特异 MRNA.

24.1 RNAi ,siRNA 5 shRNA 比较

昂贵 shRNA 容易 设计 体外 转录 体内 生产

siRNA 设计 主要 通过 表达 ,但 合成 体外 转录

毒性 问题 ,特别 哺乳 细胞 神经 毒性 通常 问题 抑制 效率 维持 5 7 获得 稳定 细胞 开始 结束 需要 纯度 聚焦 短期 作用 持续 基因 表达 抑制

开始 结束

聚焦 作用

24.3.1 siRNA 导入 途径

合适 转录 载体 (Brummelkamp ,2002) 导入 细胞 制造 siRNA, 纯化 siRNA 细胞 导入 siRNA。 场合 dsRNA 阳离子

24 RNA 干扰 目标 基因 沉默

导入 细胞 (Gruber ,2004) 先前 基因 ) 【一 ) 体内 细胞 完全 配对 dsRNA Dicer 作用 ,产生 特征 21 ~ 23bp siRNA; siRNA 提示 除了 26nt dsRNA 诱导 RNAi (Parrish ,2000)

dsRNA 涉及 哺乳 动物 细胞 实验 极其 重要 30bp dsRNA 干扰 细胞 细胞 植物 明了 RNAIi 功效 明了 体外 产生 siRNA 哺乳 动物 细胞 dsRNA 导入 细胞 (Elbashir ,2001a; Elbashir ,2001b) 体外 合成 19bp siRNA 诱导 RNAi。

策略 体外 合成 500 750bp dsRNA, Dicer 预先 消化 创建 21~23bp siRNA FE (图 24.2)。 siRNA 细胞 诱导 RNAi。 提供 广泛 覆盖 整个 mRNA 需要 复杂 siRNA 沉默 基因 精确 siR- NA 序列 清楚 体外 方法 特别

T7 \ 基因 片段

PCR 启动 | \T7 .

正义 (+)RNA C)RNA

| mm mm Dicer

TI TI TI “TMM siRNA TI

24.2 HM siRNA 体外 合成 PCR T7 转录 启动 19 ) 转录 T7 转录 启动 PCR 产物 体外 转录 获得 正义 RNA RNA。 退火 ,Dicer siRNA FE. Mia siRNA 常规 RISC 作用

24.3.2 shRNA 导入 方法

shRNA (Paddison ,2002; Yu ,2002) 抑制 基因 表达 dsRNA siRNA 替代 。shRNA RNA, 重复 序列 特点 shRNA 体外 CP 24. 3) 通过 使 转录 载体 体内 ddRNAi) 生成 ,shRNA Dicer 引起 基因 沉默 使 siRNA 情况 AW. shRNA 特征 : 沉默 mRNA 完全 相同 21 29 正义 (+) 8 正义 序列 精确 互补 序列 siRNA 特征 3 UU 悬垂 24.4) SRNA shRNA 通过 导入 哺乳 动物 细胞

337 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

T7 序列 + .被 沉默 基因 序列

(708 FRR) | 退火 oo i aaa PCRIN LARD AOFESI, T7 模板

转录 重复 序列 体外 转录 shRNA 形成 shRNA

wm) mm) ,mma “SO G

TOM. siRNA “Tu

24.3 体外 产生 shRNA 方法 PCR 构建 转录 模板 24. 2 T7 启动 构建 模板 重复 序列 正义 形成 结构 快速 形成 SHRNA Dicer 诱导 RNAi AY siRNA FE

a

5'-GGACAGAAGUUAAGACGAGCAUU-3’

a m4 3'-UUCCUGUCUUCAAUUCUGCUCGU-S’

oe’ G C 5'-GGACAGAAGUUAAGACGAGCA

e 3'-UUCCUGUCUUCAAUUCUGCUCGU G

G

A A

24.4 比较 siRNA fl shRNA 结构 。(a) siRNA 互补 RNA 特征 3 。(b) shRNA 正义 使 快速 形成 结构 8 SIRNA 3'UU 悬垂 正义 相连 随后 Dicer 解除 ,shRNA siRNA。

沉默 同一 mRNA, 它们 相应 完全 相同 序列

24.3.3 DNA 指导 RNAi 技术

诱导 RNA 基因 沉默 方法 ddRNAi。 dsRNA 方法 生成 siRNA 体内 技术

重要 注意 生成 dsRNA 诱导 哺乳 动物 细胞 干扰 dsRNA 进入 细胞 诱导 干扰 ddRNAi 情况 Dicer 负责 siRNA 合成 导致 基因 沉默 dd RNAi 转录 载体 任何 标准 细胞。 方法 优点 节省 费用 干扰 通过 诱导 启动 随意 RNAi 历程 转录 载体 (如 Benitec; Brisbane, Australia) 含有

序列 便 转录 RNA 形成 结构 作为 Dicer siRNA (A 24.5),

338 -

24 RNA 干扰 目标 基因

ull) shRNA Dior ki "TOMI. siRNA 诱导 RNAi ni

24.5 产生 shRNA 体内 转录 模板 模板 U6 启动 操纵 CRNA 聚合 )。 注意 : 正义 方向 相互 编码 产物 shRNA 转录 Dicer Dicer 转变 shRNA siRNA 诱导 RNAi 途径

24.3.4 siRNA 导入 哺乳 动物 细胞 技术

清楚 许多 方法 RNAi 抑制 基因 表达 方法 根据 传输 方法 决定 特定 细胞 体内 生成 shRNA 问题

任何 dsRNA 体外 生成 技术 传输 细胞 siRNA shRNA 方法 传输 哺乳 动物 细胞 问题 任何 30bp dsRNA 引发 细胞 (Martinand ,1998) 细胞 问题 排除 困难 ,shRNA 体内 生成 细胞 生成 dsRNA 引起 干扰 体内 转录 策略 涉及 设计 重复 序列 使 转录 形成 迅速 细胞 启动 RNAi 途径。 基因 沉默 必须 Western 免疫 技术 /或 RT-PCR

24.4 % &@ SIRNA 设计

疑问 基因 极度 依赖 RNAi RA. RNAi 检查 体内 体外 基因 功能 主要 方法 RNAi 取决 dsRNA 正确 设计 基因 序列 完成 RNA 设计 生物 信息 缺少 细胞 影响 RNAi, 抑制 RNAi, ABLES RNAi 相关 产品 公司 提供 免费 进入 设计 工具 CE 24. 2)

24.2 HEH SIRNA 设计 工具

Promega www. promega. com/siRNADesigner

Qiagen www. qiagen. com/siRNA

Dharmacon www. dharmacon. com/siDesign

Ambion http: //ambion. com/techlib/misc/siRNA_ tools. html Oligo Engine www. oligoengine. com

Whitehead Institute http: //jura. wi. mit. edu/siRNAext

YE: siRNA—#i Fit RNA, - 339 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

裂解

siRNA 21 23nt UU3' 设计 siRNA 规则 遵守 涉及 RNAi 技术 公司 专利 算法 使 沉默 基因 siRNA 设计 原理 直观 设计 PCR FARAH BIN ie 指南 提示 siRNA 设计 基础 综述 ( Tuschl’s 规则 ) CH www. rockefeller. edu/labheads/tuschl/siRNA. html). 包括 : 限制 (G+O) 含量 50% 3 4 基因 任何 相似 序列 21 序列 ) 因为 siRNA 预知 设计 siRNA。 PCR 引物 形成 希望 结构 。siRNA UU3' BE, mRNA AA 开始 计划 设计 体外 体内 ddRNAi 避免 含有 连续 4 4 相同 因为 引起 常用 U6 启动 (Paul , 2002) 转录 终止 相关 ddRNAi 方法 4 5 AS Wi EF (EE RF AE

因为 抑制 比率 转录 变化 mRNA 实验 3 shRNA, 找到 基因 表达 (> 90%) 序列 确保 基因 沉默 正常 没有 理由 策略 合成 dsRNA Wate) 12 7B mRNA。 RNA 开始 转录 完全 编码 Dicer 黏合 几乎 转录 siRNA.

24.5 体外 体内 问题

尽管 植物 真菌 广泛 存在 RNAi 讽刺 意味 dsRNA 进行 强大 调控 依然 RNAi 存在 目前 清晰 显示 存在 微妙 差别 。RNAi 初级 阶段 技术 需要 估计 作为 模型 系统 24. 3 技术 使 相关 优点 缺点 ,RNAIi 作为 工具 完善 研究 基因 功能 肯定 吸引

24.3 RNAi 优点 缺点

RNA #2 tt DNA BRP

检测 基因 功能

目的 基因 需要 技术 训练

研究 基因 功能 研究 什么 基因 参与 什么 途径 系统 | 30bp dsRNA 哺乳 动物 细胞 调和 干扰 响应 FB 基因 ,导致

进化 保守 ,降解 mRNA 细胞 ,特别 神经 ,倾向 RNAi

LE LY SE BEE WE HE ; 重复 问题

。340 -

24 RNA 干扰 目标 基因 沉默

ik 怎么 合理 设计 ,其 SIRNA 容易 导入 哺乳 动物 细胞 4 合理 设计 , si , 实验 误差 途径 非常 符合 鉴定 缺失 合适 阳性 阴性 ,dsRNA , 因为 实验 方案 , 比较 困难 合成 RNAi FER AE HF BH CARER RAR AP! HPLC )

: dsRNA RNA;, HPLC ; mRNA 信使 RNA; RNAi—RNA FH; siRNA RNA.

诱导 RNAi 细胞 决定 dsRNA 哺乳 动物 细胞 30bp dsRNA 诱导 干扰 SSAC. iii) 30bp dsRNA 显著 诱导 RNAi。 基本 差异 : SIRNA 体外 制备 哺乳 动物 细胞 dsRNA 哺乳 动物 细胞 Dicer 负责 SIRNA 生成

影响 RNAi 效率 因素 包括 : mRNA 编码 蛋白 稳定 mRNA 精确 dsRNA 导入 细胞 效率 知道 siRNA mRNA 必须 100%% 哺乳 动物 细胞 明显 降低 RNAi 作用 降低 干扰 poly I: C“〈 诱导 干扰 强制 @ 合成 RNA) 清楚 明了

理性 设计 siRNA mRNA 特征 siRNA 导向 mR- NA 剪接 除去 (图 24.6), 那个 特定 SIRNA 引起 基因 沉默

ASE pe 合子 2

amet TTT

siRNA 沉默 ? 转录 ! | 2 转录 ? 转录 3 24. 6 不同 剪接 影响 RNAi 基因 mRNA 生物 合成 hnRNA 剪接 正常 siRNA mRNA 剪接 除去 siRNA 模板 结合 RNAi 诱导 什么 设计 siRNA 抑制 基因 表达 剪接 主要 原因

改善 RNAi 效率 dsRNA 使 2'-F-CTP 2'-F-UTP (和 通常 占有 2 ), 稳定 RNA, 使 RNA 通常 细胞 核酸 〈Capodici ,2002 )

@ Ampligen (Hemispherx Biopharma; Philadelphia, PA) 基于 RNA 诱导 干扰 响应 实验 药物 poly 1: C, Ampligen 含有 [poly(TD)-poly(C-U)](Strayer ,1982)。Ampligen 目前 临床 试验 阶段 访问 www. hemispherx. net,

341 °

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

细菌 转化 细胞 挑战 哺乳 动物 细胞 似乎 反抗 努力 效率 磷酸 伴随 毒性 输送 载体 困难 缓解 困难 siRNA WHA, 持续 培养 神经 细胞 清楚 原因 回复 情况 DNA siRNA 吸收 〈Krichevsky il Kosik, 2002). 那些 使 方法 质粒 DNA) 细胞 现象 (siRNA 细胞 吸收 ) 打开 整体 深入 基因 表达 提高 包括 质粒 、dsRNA、 SiRNA 效率 研究 正在 探索

方法 (Weil ,2002) RNAi 研究 方面 主要 问题 RNAi 抑制 作用 培养 细胞

表达 siRNA 载体 治疗 特殊 遗传 疾病 ,不 疾病 《〈 ) 体外 系统 基因 沉默 任何 作用

24.6 参考 文献

Brummelkamp, T. R., Bernards, R., and Agami, R. (2002). A system for stable expression of short interfering RNAs in mammalian cells. Science 296, 550.

Capodici, J., Kariko, K., and Weissman, D. (2002). Inhibition of HIV-1 infection by small interfering RNA-mediated RNA interference. J. Immunol. 169, 5196.

Carmell, M. A., Xuan, Z., Zhang, M. Q., and Hannon, G. J. (2002). The argonaute fam- ily: Tentacles that reach into RNAi, developmental control, stem cell maintenance, and tumorigenesis. Genes Dev. 16, 2733.

Elbashir, S. M., Harborth, J., Lendeckel, W., Yalcin, A., Weber, K., and Tuschl, T. (2001a). Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in cultured mammalian cells. Nature 411, 494.

Elbashir, S. M., Lendeckel, W., and Tuschl, T. (2001b). RNA interference is mediated by 21- and 22-nucleotide RNAs. Genes Dev. 15, 188.

Fire, A., Xu, S., Montgomery, M. K., Kostas, S. A., Driver, S. E., and Mello, C. C. (1998). Potent and specific interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature 391, 806.

Green, P., Pines, O., and Inouye, M. (1986). The role of antisense RNA in gene regulation. Ann. Rev. Biochem. 55, 569.

Gruber, J., Boese, G., Tuschl, T., Osburn, M., and Weber, K. (2004). RNA interference by osmotic lysis of pinosomes: Liposome-independent transfection of siRNAs into mam- malian cells. Bio Techniques 37, 96.

Guo, S., and Kemphues, K. J. (1995). par-1, a gene required for establishing polarity in C ele- gans, encodes a putative Ser/Thr kinase that is asymmetrically distributed. Cell 81, 611.

Hammond, S. M., Bernstein, E., Beach, D., and Hannon, G. J. (2000). An RNA-directed nuclease mediates post-transcriptional gene silencing in Drosophila cells. Nature 404, 293.

Knecht, D. A., and Loomis, W. F. (1987). Antisense RNA inactivation of myosin heavy chain gene expression in Dictyostelium discoideum. Science 236, 1081.

Krichevsky, A. M., and Kosik, K. S. (2002). Efficient RNAi-mediated gene silencing in neuronal cells using Qiagen siRNA and TransMessenger transfection reagent. Proc.

¢ 342 -

$248 RNA 干扰 目标 基因 沉默

Natl. Acad. Sci. 99, 11926. Llave, C., Kasschau, K. D., and Carrington, J. C. (2000). Virus-encoded suppressor of

post-transcriptional gene silencing targets a maintenance step in the silencing pathway. Proc. Natl. Acad. Sci. 97, 13401.

Martinand, C, Salehzada, T., Silhol, M., Lebleu, B., and Bisbol, C. (1998). The RNase L inhibitor (RLI) is induced by double-stranded RNA. J Interferon Cytokine Res. 18, 1031.

Merrett, A. F., Aufsatz, W., van Der Winden, J., Matzke, M. A., and Matzke, A. J. (2000). Transcriptional silencing and promoter methylation triggered by double-stranded RNA. EMBO J. 19, 5194.

Mullis, K. B., and Faloona, F. A. (1987). Specific synthesis of DNA in vitro via a poly- merase-catalyzed chain reaction. Methods Enzymol. 155, 335.

Mullis, K. B., Faloona, F. A., Scharf, S., Saiki, R., Horn, G., and Erlich, H. (1986). Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: The polymerase chain reaction. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 51, 263.

Napoli, C., Lemieux, C., and Jorgensen, R. (1990). Introduction of a chalcone synthase gene into Petunia results in reversible co-suppression of homologous genes in trans. Plant Cell 2, 279.

Nishikura, K., and Murray, J. M. (1987). Antisense RNA of proto-oncogene c-fos blocks renewed growth of quiescent 3T3 cells. Mol. Cell. Biol. 7, 639.

Paddison, P. J., Caudy, A. A., Bernstein, E., Hannon, G. J., and Conklin, D. S. (2002). Short hairpin RNAs (shRNAs) induce sequence-specific silencing in mammalian cells. Genes Dev. 16, 948.

Parrish, S., Fleenor, J., Xu, S., Mello, C., and Fire, A. (2000). Functional anatomy of a dsRNA trigger: Differential requirement of the two trigger strands in RNA interfer- ence. Mol. Cell 6, 1077.

Paul, C. P., Good, P. D., Winer, I., and Engelke, D. R. (2002). Effective expression of small interfering RNA in human cells. Nat. Biotechnol. 20, 50S.

Pélissier, T., and Wessenegger, M. (2000). A DNA target of 30bp is sufficient for RNA- directed DNA methylation. RNA 6, 55.

Saiki, R. K., Scharf, S., Faloona, F., Mullis, K. B., Horn, G. T., Erlich, H. A., and Arnheim, N. (1985). Enzymatic amplification of B-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science 230, 1350.

Strayer, D. C., Carter, W. A., Brodsky, I., Gillespie, D. H., Greene, J. J., and Ts’o, P. O. (1982). Clinical studies with mismatched double-stranded RNA. Tex. Rep. Biol. Med. 41, 663.

van der Krol, A. R., Mur, L. A., Beld, M., Mol, J. N., and Stuitje, A. R. (1990). Flavonoid genes in petunia: Addition of a limited number of gene copies may lead to a suppres- sion of gene expression. Plant Cell 2, 291.

Weil, D., Gargon, L., Harper, M., Duménil, D., Dautry, F., and Kress, M. (2002). Targeting the kinesin Eg5 to monitor siRNA transfection in mammalian cells. Bio Techniques 33, 1244.

Wessenegger, M., Heimes, S., Riedel, L., and Sanger, H. L. (1994). RNA-direct de novo methylation of genomic sequences in plants. Cell 76, 567.

Yu, J-Y, DeRuiter, S. L., and Turner, D. L. (2002). RNA interference by expression of short-interfering RNAs and hairpin RNAs in mammalian cells. Proc. Natl. Acad. Sci. 99, 6047.

Zamecnik, P. C., and Stephensen, M. L. (1978). Inhibition of Rous sarcoma virus replica- tion and cell transformation by a specific oligodeoxynucleotide. Proc. Natl. Acad. Sci.

oo 343 .

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

75, 280. Zamore, P. D., Tuschl, T., Sharp, P. A., and Bartel, D. P. (2000), RNAi: double-stranded

RNA directs the ATP-dependent cleavage of mRNA at 21 to 23 nucleotide ea as Cell 101, 25. (23%; Ow FR

“at

‘TT

S255 BAA. Cra. SERA 信息

25.1 AAR

基因 计划 圆满 完成 揭示 细胞 遗传 结构 方式 基因 序列 首次 基因 结构 结构 物种 关联 突变 引起 疾病 克隆 (positional clo- ning, 通过 遗传 确定 方法 鉴定 基因 ) 精确 手段 正常 携带 / DNA 限制 切割 产生 切片 切片 (RFLP) 遗传 紊乱 8@。 基于 PCR 自动 检测 方法 细菌 动物 测序 科学 直接 进入 基因

完善 定义 基因 功能 “〈 编码 RNA 蛋白质) 研究 兴趣 狂热 需要 流行 th hn AE, 表示 相关 遗传 信息 方法 |] 才能 基因 “组 ", “-omics” 文生 相关 (_ same ) 读者 便利 简要 工作 定义 信息 独特 混合 基础 生物 信息 aad 科学 涉及 使 数字 技术 DNA FNM. RNA DNA UC RF BUF (aomenem| —> (em) 信息 信息 诸多 “组 ”学 显得 251 “组 ", 表达 功能 超级 计算 计算 模拟 关系 。DNA 编码 信息 蛋白 (in silico proteomics) 预测 表达 导致 功能 研究 工具 遗传 | TAR REI 蛋白质 法则 UN aa DNA-~RNA-> 白质 描述 那样 存在 紧密 联系 2 )

牢记 ,DNA 序列 信息 整个 故事 基因 DNA

@ 遗传 疾病 RFLP.

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

具有 功能 “作用 ”。 回忆 RNA 检测 基因 表达 参数 RNA 同样 表述 整个 故事 hnRNA 快速 代谢 mRNA 翻译 基因 稳定 细胞 RNA 蛋白质 研究 RNA 蛋白 表达 数据 获得 特定 完整 细胞 生理 必要 (AM 25.1).

25.2 €Z24A4

accession number: 编号 序列 GER4A DNA cDNA) 氨基 序列 蛋白 ) 数字 标识 编号 相当 电子 卡片 目录 利于 数据 检索

bioinformatics: 生物 信息 信息 技术 生物 工程 手段 结合 使 庞大 核酸 蛋白 序列 信息 进行 归档 扩展 领域 9 芯片 进行 归档

genome: 基因 染色 DNA 整体 基因 操作 ”需要 细胞 线粒体 基因

genomics: 基因 基因 结构 研究 研究 DNA 序列 数据 获得 密切 相关

chemical genomics: 基因 基因 进行 操作 信号 途径 扰乱 细胞 材料 影响

functional genomics: 功能 基因 细胞 RNA 研究 细胞 RNA 调控 研究 基因 表达 研究

metabolome: 代谢 细胞 特定 生物 样品 代谢

metabolomics: 代谢 代谢 蛋白 代谢 造成 影响 研究 常常 揭示 基因 功能

proteome: 特定 细胞 产生 蛋白 ; 细胞 纯化 翻译 产物

proteomics: 蛋白 特定 生化 细胞 蛋白质 研究 目标 包括 : 结构 白质 自然 刺激 蛋白 进行 变化 /疾病 状态 细胞 蛋白 白质 建立 基因 功能 联系 系统 手段 利于 同时 揭示 蛋白 功能 研发 主要 技术 平台

transcriptome: 转录 特定 特定 细胞 产生 MRNA,

transcriptomics: 转录 生物 转录 研究 细胞 环境 改变 mRNA 表达 改变 进行 研究

25.3 基因 基因 基因 测序 生成 许多 信息 若干 目的 相关 基因 测序 生成

@ IQBase (Media Cybernetics; www. mediacy. com) 操作 软件 .346 -

25 基因组、 转录 白质 生物 信息

使 强大 计算 杰出 软件 数据 查找 目标 信息 基因 测序 产生 巨大 信息 存在 方法 研究 轻易 进行 查询 信息 功能 (data mining), 信息 科学 生物 结合 拥有 职业

基因 目标 阐明 离散 基因 精确 DNA 基本 研究 方法 检查 序列 开放 阅读 (open reading frame,ORF) 密码 核酸 开放 阅读 包括 密码 (ATG, GTG, 频率 ) 终止 密码 (TAA, TAG TGA)。 编码 编码 根据 保守 5GT 3 AG 剪接 容易 识别 基因 包含 序列 基因 存在 细胞 原核 细胞 拥有 遗传 信息 噬菌体 ) X1749, 同一 DNA 使 阅读 基因 完全 预料 : 虽然 病毒 基因 5375nt), 必须 制造 指导 病毒 传代 合成 必需 蛋白 ; @ 复制 病毒 基因 早已 优化 效率

规模 测序 片段 超过 50000bp, 质粒 显得 采用 承载 特殊 载体 YAC (yeast artificial chromosome, ) BAC (bacterial artificial chromosome, ), 复杂 基因 进行 使 BAC YAC, 允许 启动 调控 整个 基因 进行 测序 确认 遗传 连锁 关系 基因 结构 方法 隶属 结构 基因 范畴 功能 基因 注重 基因 表达 模式 基因 特殊

25.4 转录 转录

细胞 产生 mRNA 具有 转录 广义 定性 RNA 方法 讨论 确认 转录 23 ) 检测 特定 实验 基因 表达 模式 实验 刺激 基因 表达 改变 芯片 技术 想象 精细 杂交 细胞 裂解 mRNA 直接 cDNA, 固定 支持 cDNA 进行 杂交 技术

作为 mRNA 表达 镜像 ,cDNA 测序 数据 反映 mRNA 复杂 精确 反映 表达 数据 表达 序列 标签 (expressed sequence tag, EST). EST 培养 CDNA 文库 ) 生物 〈Adams ,1991) cDNA 克隆 序列 方法 20 世纪 90 基因 表达 系列 (〈serial analysis of gene expression, SAGE; Velculescu ,1995) 细胞 mR- NA 合成 cDNA (9~10bp) 进行 标签 cDNA, 特定 转录 特定 标签 连接 形成 容易 测序 特定

© 根据 历史 记录 ,@X174 完成 测序 基因 (1977). J 347 .

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

频率 代表 相应 mRNA AYE. SAGE 研究 基因 表达 方法 ; 传统 EST 需要 明显 DNA 进行 测序 ,EST SAGE 提供 涉及 物种 基因 表达 信息 若干 数据 基础 基因 表达 描述 表明 许多 基因 产生 转录 (transcription start site, TSS) 选择 转录 生成 蛋白

25.5 £€ORDSL.EORDG

45 DNA RNA 白质 相对 复杂 普遍 认为 基因 35000 基因 500000~1000000 蛋白 ;因为 翻译 修饰 伴随 白质 整个 工事 酸化 白质 裂解 复杂 蛋白 -蛋白 作用 白质 动态 细胞 使 检测 复杂 白质 研究 识别 基因 功能 非常 重要 蛋白 蛋白 细胞 蛋白 表达 模式 进行 白质 信息 生物 信息 专门

细胞 酵母 ) 决定 蛋白质 裂解 细胞 方式 : LR 消化 裂解 研磨 技术 早已 详细 描述 购买 白质 纯化 试剂 试剂 技术 供应 商会 提供 相应 简要 操作 指南

1975 提出 双向 (2D) BER HL YK (Klose, 1975; O’Farrell, 1975) 初步 扫描 工具 Ol. HARA BAH pH) 蛋白 样品 进行 垂直 电泳 电泳 同时 蛋白 样品 指纹 相应 蛋白 正比 RNA 蛋白 双向 保证 避免 蛋白 蛋白 屏蔽 重要 提高 蛋白 策略 细胞 裂解 〈Corthals ,2000; Zuo Speicher,2000) 广泛 采用 方法 基于 策略 简化 样品 专门 软件 自动 识别 进行 定量 方法 提供 进行 电子 归档 方法

特定 蛋白 蛋白 消化 产生 许多 质谱 鉴定 常见 基质 辅助 激光 解吸 电离 飞行 (matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight, MALDI) 20 世纪 80 ,MALDI 蛋白 重要 工具 DNA 编码 存在 蛋白 MALDI 鉴定 氨基 序列 遗传 序列 进行 编码 白质 基因 物理 代表 功能 白质 动能 阐明 通常 非常 困难 特定 蛋白 蛋白 作用 巨大 蛋白 复合

目前 鉴定 蛋白 功能 策略 酵母 免疫 共振 〈NMR)、 电泳 色谱 (HPLC) 检测 蛋白 - 白质

:8

25 基因组、 转录 白质 生物 信息

蛋白质- 相互 作用 蛋白 芯片 蛋白 阵列 ) 正在 制备 代表 系列 生物 功能 抗体 抗体 芯片 主题 芯片 针对 感染 疾病 细胞 检测 蛋白 表达 常用 Cy3 Cyd 标记 生物 蛋白 标记 蛋白 抗体 芯片 杂交 传统 手段 转录 -翻译 系统 细胞 裂解 蛋白

虽然 蛋白 数据 数量 增长 GenBank 公共 数据 访问 私有 蛋白 数据 许可 /或 交付 访问 费用 维护 蛋白质 专业 蛋白质 协会 (the Proteome Society; www. proteome. org), Al #iK th H ACHE PP (the Microarray Gene Expression Data Society; www. mged. org) 蛋白 (the Human Pro- teome Organization; www. hupo. org) 蛋白质 翻译 修饰 研究 方法 因此 (Hames Higgins, 1999; Liebler, 2001; Kannicht, 2002),

值得 氨基 序列 翻译 修饰 DNA RNA HK 定制 定制 合成 免疫 抗原 决定 活性 抑制 蛋白 -蛋白 相互 作用 白质 - 相互 作用 疫苗 研究 抗体

研究 细胞 体液 重要 代谢 蛋白 合理 延伸 白质 关注 细胞 蛋白 引起 变化 变化 直接 蛋白 翻译 修饰 代谢 产生 30 蛋白 - 序列 数据 复兴 评估 药物 毒性 副作用 整体 安全 代谢 研究 方法 NMR 分析 传统 色谱 气相 色谱 技术

25.6 生物 信息

核酸 蛋白质 海量 数据 增加 进入 公用 数据 使 数据 任何 提供 支持 数据 询问 搜索 软件 美国 国家 生物 技术 信息 (National Center of Biotechnology Information, NCBI; Be- thesda, 兰州 ) 试验 (European Molecular Biology Laboratory, EM- BL; 德国 ,海德堡 ) DNA 数据 (DNA Data Bank of Japan, DDBJ; Mishima, H AS) NCBI 协作 世界 研究 提供 海量 数据 @ 访问 途径 便捷 访问 专业 数据 蛋白 序列 研究 〈The In- stitute for Genome Research, TIGR) Swiss-Prot。 25. 1 罗列 生物 信息

NCBI 主页 搜索 特异 DNA 序列 〈Entrez) 染色 体位 〈《Human Map Viewer) 特定 基因 相关 科学 文献 (PubMed) 提供 熟悉 软件 工具

@ 截至 2004 5 A, GenBank 数据 366 亿 序列 数据 3 序列 访 www. ncbi. nih. gov/genbank/genbankstats. html1, 当今 数据

- 349 -

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

#25.1 重要 生物 信息

NCBI www. ncbi. nlm. nih. gov

EMBL www. embl. org

DDBJ www. ddbj. nig. ac. jp

TIGR www. tigr. org

Swiss-Prot http: //us. expasy. org/sprot Codon utilization tables http://www. kazusa. or. jp/codon/

基因 测序 、cDNA 测序 蛋白 测序 信息 希望 使 信息 研究 挑战 怎样 才能 含有 亿 序列 信息 数据 进行 搜索 获得 特定 情报 ?” 程序 问题 因此 简化 DNA 序列 蛋白 序列 进行 搜索 鉴定 BLAST 基本 搜索 工具 (Basic Local Alignment Search Tool) 功能 强大 软件 数据 搜索 输入 序列 核酸 序列 蛋白 序列 显示 序列 软件 GRAIL (compbio. ornl. gov/public/tools) DNA 序列 鉴别 完整 基因 特征

BLAST 直接 使 (www. ncbi. nlm. nih. gov/BLAST)。 J BLAST 链接 BLAST 进行 搜索 简单 直接 方法 选择 核酸 核酸 BLAST (blastn)。 需要 输入 搜索 字符 希望 研究 核酸 序列 字符 手动 输入 通过 拷贝 粘贴 实现 输入 因为 C G 选择 搜索 输入 a、g、c、t 序列 搜索 通过 “FROM” “TO” 口中 输入 终止 核酸 选择 搜索 使 数据 特殊 需要 使 设置 核酸 “nr”, 执行 完整 搜索 8。 BLAST 开始 搜索 若干 因素 搜索 需要 完成 。BLAST 估计 搜索 RID 问号 ), 重要 数据 传输 索引 “Format” 打开 显示 BLAST 搜索 结果 窗口 搜索 结果 序列 数值 S ), 反映 提供 序列 数据 搜索 序列 统计 ), 反映 找寻 同样 S 序列 任何 BLAST 搜索 SARA E (应 1.0), 序列 吻合

随时 登陆 信息 工具 进行 练习 熟悉 正确 使 BLAST。 序列 进行 实践 比较 方便 方式 自己 试验 研究 序列 基因 PCR 引物 序列 熟悉 搜索

自己 编造 序列

没有 搜索 DNA 序列 ,NCBI 提供 扩展 资源 印象 深刻 NCBI 疾病 进程 相关 基因 显示 详细 遗传 找到 - 检查 蛋白 序列 工具 基于 X 射线 晶体 数据 蛋白

结构 资源 :免费 开放 访 探索 研究 绝对

@ 生物 物种 EST 特定 数据 挑选 - 350 -

25 基因组、 转录 白质 生物 信息

直人

Adams, M. D., Kelley, J. M., Gocayne, J. D., Dubnick, M., Polymeropoulos, M. H., Xiao, H., Merril, C. R., Wu, A., Olde, B., Moreno, R. F., Kerlavage, A. R., McCombie, W. R.., and Venter, J. C. (1991). Complementary DNA sequencing: Expressed sequence tags and human genome project. Science 252, 1651.

Corthals, G. L., Wasinger, V. C., Hochstrasser, D. F., and Sanchez, J. C. (2000). The dynamic range of protein expression: A challenge for proteomic research. Eiectrophoresis 21, 1104.

Higgins, S. J., and Hames, B. D. (1999). “Post-Translational Processing: A Practical Approach.” Oxford University Press, New York, NY.

Kannicht, C. (2002). “Post-Translational Modification of Proteins: Tools for Functional Proteomics.” Humana Press, Totowa, NJ.

Klose, J. (1975). Protein mapping by combined isoelectric focusing and electrophoresis of mouse tissues. A novel approach to testing for induced point mutations in mammals. Humangenetik 26, 231.

Liebler, D. C. (2001). “Introduction to Proteomics.” Humana Press, Totowa, NJ.

O’Farrell, P. H. (1975). High-resolution two-dimensional electrophoresis of proteins. J. Biol. Chem. 250, 4007.

Velculescu, V. E., Zhang, L., Vogelstein, B., and Kinsler, K. W. (1995). Serial analysis of gene expression. Science 270, 484.

Zuo, X., and Speicher, D. W. (2000). A method of global analysis of complex proteomes using sample prefractionation by solution isoelectrofocusing prior to two-dimensional electrophoresis. Anal. Biochem. 284, 266.

(Set; )

al

26 RNA 6

章节 实验 方案 材料 RNA 方法 技术 合并 系统 认识 转录 产物 基因 表达 调控 作用 特殊 信使 RNA (mRNA) 作为 基因 表达 参数 任何 实验 模型 极为 基础 使 Western 免疫 实验 方法 蛋白 表达 进行 检测 完整 阐述 实验 探讨 基因 调控 典型 FRNA 实验 设计 稳定 RNA,( ) 测定 实验 细胞 转录 速率 判定 观测 ) mRNA 改变 转录 变化 转录 事件 造成 变化

研究 细胞 RNA 进行 Northern 直接 检测 整体 转录 转录 细胞 RNA 细胞 RNA 进行 研究 确认 基因 表达 调控 转录 转录 Northern 物理 方法 RNA 固定 尼龙 支持 阻碍 RNA 核酸 接触 Northern 揭示 mRNA RNA 细胞 表达 RNA 方法 技术 含量 转录 BY UETT I dT.

转录 量化 方法 S1 核酸 RNase 保护 实验 代表 当然 聚合 (PCR) 技术 灵敏 提高 必须 poly(A) AY RNA 进行 纯化 。PCR 技术 使 需要 满足 实验 需要 poly(A)+ poly(A)~ hy RNA # 进行 研究 mRNA 进行 方法 实验 结果 通过 显影 Cerenkov 计数 定量 进一步 数据 结合 RNA 特性 评估 基因 表达 方法 希望 获得 灵敏 15 ,PCR 技术 推动 细胞 生物 探查 深度 技术 改变, 使 具有 持续 广

文献 报道 转录 诱导 术语 “相对 ”来 表达 比较 实验 细胞 特定 RNA 含量 相对 数值 报道 声称 获得 细胞 指数 生长 汇聚 同类 细胞 肿瘤 基因 omy

抑制 导致 me 清楚 转录 细胞

数量 转录 增多 减少 陈述 样本 确切 数量 通过 ”352 -

26 RNA 范例

数量 实时 PCR 精确

模式 系统 转录 特性 转录 产物 即时 状况 逃逸 实验 测定 基因 转录 速率 希望 研究 导致 那些 观察 差异 RNA 生物 基因 层次 mRNA 调控 “〈 ) 基因 结果 转录 变化 影响 因素 编码 错误 影响 基因 表达 研究 利用 Southern 研究 结构 变化 物种 序列 测定 信息 方面 工作 调控 进行

同样 细胞 基因 表达 功能 形式 告终 实验 系统 清晰 定义 基因 表达 翻译 调控 翻译 调控 进行 定性 帮助 mRNA 提示 它们 翻译 实验 引入 细胞 生物 变化 mRNA 转运 翻译 随后 Western 验证 West- ern 补充 技术 RNA 干扰 (RNAi) 问题 进行 研究 记得 基因 表达 翻译 修饰 特殊 实验 定义 参数 改变 蛋白 研究 方法 研究 蛋白质 功能 清晰 认识 若干 方面 进行 细胞 生物 鉴定 较为 适宜

26.1 典型 实验

没有 什么 典型 实验 特定 问题 耗费 工作 美元 试剂 科技 手段 系统 简单 聪明 26. 1) 低廉 ”的 方法 直接 讨论 模型 功能 进行 评估 众多 采集 自若 样本 转录 足够 斑点 印迹 简单 方法 容易 达到 目的 电泳 RNA 使 斑点 印迹 损失 RNA 认识 转录 产生 巨大 实验 检测 确认 cDNA 序列 转录 必要 修改 潜在 改动 包括 : RNA 纯化 方法 ; 生物

确定 研究 问题 恰当 实验 体系 选择 纯化 RNA 方法

进行 初步 确认 实验 系统 目的 基因 表达 具体 方法 选择 研究 决定

决定 操作

26.1 初步 决定 实验 系统 合适 装备 技术 解决 问题 什么 合理 低廉 手段 重要 信息 判断 研究 生物 足以 支持 预计 实验 充足 质量 RNA ¢ 353 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

; @@ 敏感 实验 方法 ; 药品 生理 刺激 诱导 目的 基因 表达

许多 转录 RNA 细胞 便 降解 均一 RNA (heterogeneous nuclear RNA, hnRNA) mRNA 形式 现在 细胞 定性 实验 细胞 RNA 细胞 RNA 进行 非常 细胞 RNA RNA 杂交 暗示 转录 调控 作用 初评 振奋 数据 系统 进行 细致 比较 合适

尽管 灵敏 定量 方法 没有 研究 定量 使 Northern Northern 检测 转录 方法 《图 26.2)。 Northern 转录 选用 特异 数据 ) 研究 必须 注意 印迹 检测 正在 研究 基因 ;, 转录 常常 Northern 检测 进行 Northern 同时 进行 PCR 评价 数据 信和 明智 操作 印迹 检测 信号 RNA 检测 质量 足够 )。

纯化 细胞 细胞 poly(A) mRNA 文件

PCR 测序

含量 质量 进行 评估 决定 操作

26.2 Northern 测定 寻找 同一 基因 转录 (multiple transcripts) 建议 同一 RNA 样品 基于 PCR 技术 平行 实验 策略 转录 Northern 检测 平时 巨大 帮助

转录 灵敏 定量 方法 那些 基于 杂交 技术 核酸 实验 芯片 基于 PCR 技术 实验 26. 3) 包括 设计 测定 测定 实验 细胞 转录 速度 实验 实验 转录 速度 Northern RT-PCR 结果 衡量 结论 显示 基因 表达 变化 结构 变化 调控 影响 结果 Southern 验证

PCR 技术 灵敏 受到 评价 任何 实验 背景 革命 手段 cDNA 基因 DNA 序列 进行 检测 转录 方法 。PCR 确实 需要 知道 转录 特定 基因 序列 设计 引物 序列 提供 若干 策略 生物 工具 胜任 测定 基因 表达 RT-PCR 作为 独立 指标 先前 方法 确证 明智 。354 -

26 RNA 范例

灵敏 实验

核酸 保护 实验 灵敏 实验

RI-PCR( 形式 )

决定 操作

26.3 基于 基础 实验 CM Northern ) HU. BRA 实验 实验 灵敏 追求 实验 范围 考虑 技术 互补 筛选 PCR 基因 表达 RNA 干扰 技术 完美 艺术 方法

基因 表达 功能 基因

26.2 问题

实验 指南 列举 系列 RNA 纯化 定性 方法 注意 必要 讨论 具体 方法 灵敏

通常 相对 形式 表述 同一 实验 系列 样本 RNA 基线 指定 数值 1, 作为 实验 样本 比较 依据 注意 相对 直接 影响 随后 实验 相对 灵敏 : 目的 同一 样品 使 测试 方法 结果 往往 难以 想象 差别

20 RNA 灵敏 实时 PCR 斑点 印迹 常用 转录 实验 方法 相对 灵敏 即使 灵敏 实验 技术 提供 信息 传统 转录 测试 技术 Northern 显示 特定 产生 mRNA 数据 那些 具有 灵敏 方法 提供

26.3 进行

观察 基础 决定 关注 那些 RNA 投入 实验 资源 值得 ”进行 深入 RNA 稳定 造成 习惯 往往 倾向 合成 相应 EDNA, cDNA 文库 特定 基因 CDNA 作为 序列 使 许多 推荐 进行 实验 (这些 )。 cDNA 克隆 测序 何人 利用 生物 信息 资源 轻松 鉴定 基因

合适 cDNA 文库 目的 cDNA 藏身 研究

355

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

节省 金钱。 必须 提防 那些 古老 文库 20 世纪 80 早期 90 构建 文库 严重 缺乏 序列 克隆 近年 构建 文库 富有 代表 原因 主要 文库 通常 oligo(dT) poly(A)+ mRNA 模板 合成 使 引物 模式 往往 造成 cDNA 效率 低下 显著 缩短 cDNA 减少 cDNA WARE TE. BARD T HK 信和 显示 极端 例子 文库 根本 包括 若干 mRNA。 oligo(dT) 构建 文库 代表 RNA 构成 因为 文库 反应 poly(A)” mRNA 合理 18 oligo(dT) 合成 CDNA 同时 添加 随机 引物 使 反应 完全 PCR 方法 完成 构建 整个 文库

筛选 文库 工作 传统 方法 完成 文库 核酸 抗体 (如 ) 进行 平板 筛选 实验 〈plaque screening assay)。 掌握 序列 相关 情况 同一 基因 研究 基于 物种 同一 基因 尝试 合成 引物 PCR 方法 文库 目的 基因 文库 筛选 /或 PCR 方法 文库 特定 基因 重新 设计 CDNA 文库 cDNA 文库 意义 永久 保存 代表 细胞 裂解 瞬间 生化 记录

文库 途径 cDNA 序列 作为 North:- ern Southern 保护 实验 、DNA 测序 实验 生物 转录 沉默 状态 cDNA 进行 测序 确认 离散 度量 遗传 表达 方法 cDNA 序列 增补 GenBank, 相关 信息 设计 PCR 引物 促进 寻求 基因 DNA 深入 探索 研究 提出 特定 问题 设计 实验 基因 表达 现象 研究 涉及 (当然 )

D 确认 特定 实验 转录 (transcription start site, TSS).

@ FFA RNA 干扰 技术 探索 确切 功能

G@) 针对 诊断 PCR 引物

基因 文库 搜集 DNA 片段 基因

@) 确认 研究 -内 结构

© 确定 hnRNA 剪接 模式

D DEAT Bie Be BE Mir SE AL DNA 足迹 实验 侧翼 序列 潜在 调控 序列 蛋白 结合

@) 疑似 调控 序列 进行 突变

QD 进行 杂交 PCR, 目标 基因 细胞

QD 确认 基因 蛋白质 产物 细胞 情况

DD 临床 生物 物理 研究 原核 蛋白 表达 系统 表达 基因 产物

表达 方法 研究 基因 细胞 正常 表达 造成 影响

3) 使 报告 基因 推测 调控 进行 研究

OD 细胞 基因 进行 重组 检查 作用

CD) 负责 构建 转基因 动物 体内 产生 救生 药物

356 -

26 RNA 范例

26.4 HHILEZKEY

技术 生物 信息 、email 找到 工具 轻易 搜索 文献 进行 背景 阅读 。PubMed 快速 获得 科技 文献 途径 国家 生物 技术 信息 (National Center for Biotechnology Information, NCBI) (www. ncbi. nlm. nih. gov) 直接 浏览 www. pubmed. com PubMed 资源

独特 基于 互联 BBS 难题 科学 问题 读者 回答 相信 东西 互联 访问 提问 问题 比例 回答 使 笔者 显然 空闲 观点 怀疑

拨打 免费 电话 联系 技术 服务 15 公司 联系 方式 尽量 利用 技术 服务 产品 广告 那样 工作 首次 购买 试剂 ) 公司 沟通 折扣 使 实验 代价 尝试 东西 供应 商都 明白 试剂 效果 客户 仍然 购买 试剂 相关 产品

愉快 商都 实验 流程 . pdf 格式 邮递 FAX 巴巴 指南 需要 恰当 产品 才能 提高 实验 桌子 容易

”为 兴建 实验 扩展 实验 操作 供应 提供 什么 产品 资源 www. biosupply. net, 几乎 东西 提名 公司 “重要 公司 ”, 产品 凡是 Biosupplynet 注册 供应 商都 价值 资源 Linscott 免疫 生物 试剂 目录 Cwww. linscottsdirectory. com) 使 收录 推荐 搜索 引擎 键入 目的 产品 进行 查询

致力 生物 技术 培训 公司 专门 事实 密集 操作 〈hands- on) 训练 研讨 那些 实验 工作 博士 资格 科学 负责 研讨 关注 特定 主题 众多 技术 进行 广泛 讨论 特别 指出 ,www. DNAtech. com 通常 定期 召开 研讨

(QS; SHFR)

¢ 357

BBOACS

针对 研究 问题 拥有 革新 标准 反应 技术 研究 潜力 巨大 生物 试剂 计划 决定 利用 掌握 完成 预定 目标 设计 研究 策略 合理 正确 技术 决定 影响 结果 笔者 5R 原则 : RR (rapid)、 代表 (representative) 重复 (reproducible), FG RNase 污染 (RNase-free) (reliable).

@ 粉末 手套 抑制 PCR, 核酸 杂交 实验 背景 混乱

@ 仔细 阅读 标签 愿意 服用 药物 试剂 立刻 终结 重复 阅读 标签 确认

G@) 准备 常用 缓冲 配方 卡片 试剂 短缺 必须 实验 速配 缓冲 手边 卡片 节省

® 检测 制备 核酸 完整 简单 方法 少许 样品 微型 7cmX8cm) 评估 样品 实验 系列 取样 检测 RNA 完全 cDNA

© 样品 缓冲 绿色 反应 管内 PH 改变 完整 非常

© 使 甲醛 作为 RNA 变性 注意 pH 4.0 ,RNA 使 甲醛 酰胺 进行 离子 附录 7)。

© WEF FAW (DMSO) 作为 RNA 变性 印迹 DMSO 溶解 硝酸 纤维

沉淀 RNA 附着 DNA 那样 牢固 清楚 RNA 收集 反应 即使 RNA 沉淀 试管 造成 丢失

D 吸取 溶液 试剂 反应 短暂 离心 使 混合 避免 细作 引起 体积 误差 容易 确认 确实 体积 溶液

QO 实验 母液 工作 溶液 标签 标明 配制 标明 使 务必 检查 使 溶液 严重 生长

。358

Fs

释放 RNase.

@ RNA 制备 除非 实验 方法 特别 含有 样品 反应 实验 方法 确认 步骤 样品 反应 帮助 抑制 核酸 活性

QO 合理 方法 保存 核酸 RNA, 保证 核酸 浓度 利于 进行 稀释 底部 形状 2. 2ml Corex 容易 1. 7ml 反应 体积 回收 RNA。

70% 核酸 沉淀 核酸 形成 凝聚 它们 乙醇 溶解 清洗 相当 必要 底部 70%% 除去 足以 溶解 核酸 洗涤 2 3 95%% 清洗 干燥 速度

@ 除非 实验 方法 特别 使 核酸 沉淀 完全 干燥。 完全 干燥 核酸 样品 乙醇 RNA DNA 沉淀 容易 溶解

© 购买 (分子 生物 )。 危险 供应 标准 程序 苯酚 25ml 20 保存 直至 使 3)。 避免 重复 利于 实验

© 溶剂 白质 触及 蛋白 定量 回收 RNA 通常 比较 困难 取出 样品 限度 回收 反应 45 使 剩余 靠近 形成 1) 沿 反应 管内 滑动 触及 蛋白

1 溶剂 定量 回收 材料 技术 眼睛 皮肤 进行 适当 防护

”如 含有 溶剂 反应 进行 操作 需要 特别 眼睛 皮肤 进行 适当 防护

@ 苯酚 纯化 核酸 需要 氯仿 氯仿 / (24:1) 混合 进行 苯酚 氯仿 溶解 使 残余 苯酚 氯仿 干净 进行 因为 氧化 产物 ) 影响 核酸 样品

@ 使 溶剂 选用 制品 离心 ), 它们 苯酚 氯仿 样品 除去

© 检查 8- 乙醇 超速 离心 塑料 兼容

© 通常 缓冲 硫酸 (SDS) 控制 核酸 活力 SDS 低温 析出 操作 使 SDS (SDS );,

359

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

SDS 抑制 进行 反应 RNase 抑制 RNasin FY fe SDS 替代

@ 准备 含有 乙酸 (EDTA) 缓冲 试剂 使 CNaz- EDTA) (Nai-EDTA)。 浓度 非常 敏感 非常 重要 Naz-EDTA , Nai-EDTA 配制 缓冲 HCl 调节 pH 7 8, 使 NaCl 浓度 增高 实验 结果 造成 负面 影响

@ 除了 RNase RNA 纯化 注意 重金 存在 导致 RNA 怀疑 问题 Chelex (Bio-Rad) 使 8-FR EME 金属 ) 抑制 RNase, RNA 纯化 效率

使 特定 离心 离心 收集 核酸 沉淀 超过 离心 推荐 转速 〈g) 缩小 RNA 纯化 规模 方法 转速 Cg) 明确 需要 规模 操作 使 丙烯 微量 离心 规模 操作 选用 恰当 核酸 污染 Corex 玻璃 承受 沉淀 RNA 离心

没有 什么 统一 RNA DNA 质量 相同 清楚 适合 RNA 沉淀 状态 储存 80C 紫外 决定 样品 命运 样品 溶解 缓冲 明智 融会 显著 降低 样品 使 溶解 样品 80C 储藏

@) Azxso/Azso 1.65, 通常 表明 样品 蛋白 污染 蛋白 280nm。 残余 苯酚 造成 氯仿 ; RNA 沉淀 溶解 完全 导致 情况

2 含有 DNA 裂解 回收 RNA Bt, pH 6.0 溶剂 驱使 DNA - 界面 方法 纯化 RNA 几乎 肯定 含有 基因 DNA DNase 样品 必要 又, 尤其 PCR 相关 操作

@ 通常 杂交 同时 进行 杂交 没有 什么 足够 缓冲 保证 杂交 节奏 自如 摇动 (水平 选择 ) 互相 影响

准备 X 射线 录放 显影 确认 线性 范围 斑点 印迹 样品 稀释 梯度 精确 通过 改变 曝光 改善 底片 曝光 线性 范围 凸现 样品 差别

永久 记录 标准 X 射线 片上 标记 少量 标准 进行 杂交 猜测 标准 样品 相对

GO 制品 潜在 毒性 接受 实验 安全 操作 培训 ; 生物 相关 许多 常规 操作 危险 遵守 试剂 设备 制造 提供 安全 安全 保护 建议

GD 保存 危险 试剂 附带 材料 安全 数据 Cmaterial safety data sheet, MSDS). 实验 潜在 危险 数据 描述 事故 恰当 急救 方法

OD 打开 包装 检查 反应 活性 造成 没有 结果 !

BD 反应 配制 反应 额外 反应 体积 微量

360 -

尾声

误差 确保 足够 反应 标准 操作 适用 cDNA 反应 ) PCR 反应 配制

@) fi cDNA PCR 相关 实验 制备 反应 习惯 差异 显示 PCR 定量 显得 尤为 重要 使 细微 反应 体积 差别 终结 精确 巨大 负面 影响

确认 使 通常 储存 60%% 甘油 反应 使 体积 超过 体积 5% 比例 佳作

@) 使 REDTaq (Sigma) 确保 : 确实 反应 ;, 确认 反应 WAT .

GC) 使 PCR 优化 PCR 比较 容易 反应 体积 矿物 步骤 样品 研究 声称 矿物 反应 体积 减少

G8 微量 离心 存在

@ 绝对 使

© 实验 注意 恰当 穿戴 穿 牛仔 面部 穿刺 穿 穿 脚趾 穿 工作

(QFE; )

361

附录 1 保存 完整 准确 记录

保存 完整 准确 实验 记录 必要

保持 良好 记录 技巧 科学 研究 任何 方面 研究 影响 巨大 许多 惊讶 结果 往往 那些 失败 实验 记录 它们 记录 研究 相关 事件 价值 记录 连续 工作 重要 完成 工作 唯一 显示 数据 产生 唯一 场所

开始 研究 实践 研究 明显 重要 研究 涉及 东西 零碎 工作 面前 必须 记录 实验 管理 当时 似乎 没有 什么 意义 那些 信息 意见 任何 事情 留待 想象

实验 责任 修正 实验 实验 任何 习惯 低劣 实验 技术 研究 工作 遵循 规则 包括 细则 修正 适合 委托 实验

O 实验 开始 记录 正在 进行 实验 方面 情况 依赖 记忆 数据 结束

@ 实验 数据 “固定 ”的 往往 丢失 数据 记录

@ 记录 保存 计算 数据 输入

© 记录 清晰 极其 重要 准确 理解 重复 实验 使 标点 符号 修饰 复杂 记录 实验

@ 担心 那些 没有 达到 没有 达到 预期 结果 实验 实验 记录 通过 详细 排查 失败 原因 收集 信息 生活 随处 实验 错误

© 专业 实验 记录 装订 编码

@ 记录 实验 程序 数据 书写

@ 实验 开始 实验 提供 合理 诠释 确实 参考 注意 实验 实验 样品

@ 记录 试剂 批号 正在 进行 研究 现在 许多 供应 商都 提供 公司 产品 相关 数据 容易 粘贴 记录 当前 *,362 -

@ 实验 记录 合计 评审 这些 完整 进一步 提出 记录 建议

@ 手记 实验 行业 标准 彩色 墨水 难以 阅读 专业

© 印刷 书写

实验 使 修正 橡皮 字句 正确 字句 线 签名 变更 结果

D 记录 撕毁 转移 记录

@ 激情 研究 任何 替代

附录 2

(1) AE 缓冲 50mmol/L 乙酸 10mmol/L EDTA 调节 pH 25.3; (2) 青霉素 (1000X) 100mg/ml 溶液 〈0. 22xm) ; 428, RAFF —20°C (3) 变性 缓冲 DNA 印迹 ) 0. 5mol/L NaOH 1. 5mol/L NaCl 当心 (4) Denhardt (50X) 1% 血清 (BSA) 1% Ficoll 1% FZ Heit oS GEA] (PVP) 〈0. 22um); 248, RAFF —20°C (5) DEPC- 碳酸 ) TL “7k” i (6) DNA (5¢ YR) 10mg/ml 溶液 煮沸 18 注射 针头 保存 20YC 使 煮沸 (7) Naz-EDTA (500mmol/L) ( 乙酸 ) {KF pH7. 5 溶解 10mol/L NaOH NaOH 颗粒 调节 pH 8.0 保存 室温 (8) Wk « 363 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

10mg/ml 当心 BARD. 保存 4C (9) GTC 溶液 D) Ci ARNO 4mol/L Mi HAR A 5mmol/L te Ri, pH 7.0 0.5% N-+— ese WAR . fe ,4'C 保存 使 100mmol/L 8ME 当心 ”是 (10) 杂交 缓冲 根据 需要 配方 详情 参见 14 (11) LB (Lauria-Bertani) 培养 : 10g REAM

5g 酵母

10g 氧化 1molL NaCl 调节 pH 7.4 (12) 缓冲 0x) 50%% 10mmol/L EDTA,pH8.0 0.25% 许多 配方 包装 1ml, 保存 207C (13) MOPSL3-(CN- )- ] (10X) 200mmol/L MOPS, pH7. 0 50mmol/L 乙酸 10mmol/L Naz-EDTA,PpPH8.0 ; 室温 保存 (14) NaCl (饱和 ) (Ube) NaCl 6mol/L 溶液 需要 (15) NaOH (10mol/L) 40g NaOH 颗粒 60ml 7k 100ml Si 剧烈 ; 即使 冷却 ; 腐蚀 (16) 缓冲 DNA 印迹 ) 0. 5mol/L Tris, pH8. 0

- 364 -

We c

A ied (3

1. 5mol/L NaCl fra Se EY fey He OK Bad BC a UE BR (17) NP-40 裂解 缓冲 140mmol/L NaCl 1. 5mmol/L MgCl: 10mmol/L Tris, pH 8.5 0.5% NP-40 选择 : 使 RNase 抑制 (18) PBS (phosphate buffered saline, 盐水 Ca2+ /Mg2+ ) : 8g NaCl 0. 2g KCl 1. 44g Naz HPO, 0. 24g KH2 PO, (19) AM ) 明和 方案 附录 3 (20) 磷酸 缓冲 (10mmol/L, NazHzPO4,pH7.0) (电泳 缓冲 ) :, 39ml lmol/L NaHPO, 61ml 1mol/L Naz HPO, 检查 pH Hal 3 AAR BL (21) SDS (10%) 硫酸 ) 10g SDS 80ml 当心 ”不 吸入 SDS 粉末 100ml 室温 保存 (22) SSC (20X) (saline sodium citrate, 盐水 ) 3mol/L NaCl 0. 3mol/L 柠檬 lmol/L HCl 调节 pH # 7.0 保存 (23) SSPE (20X) (saline sodium phosphate-EDTA, -EDTA 生理 盐水 ) 3mol/L NaCl 0. 2mol/L NaH2PQ,; * H2O 0. 02mol/L Naz-EDTA vi pH 4 7.4 (24) TAE (50X) (Tris- -EDTA)

”365

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法 tan 9) oe 1g este Or

: 242g Tris 100ml 0. 5mol/L Naz-EDTA, pH8. 0 57. lml KAR 操作 ) 工作 浓度 1X AE (25) TBE (20X) (Tris- -EDTA) : 121g Tris 61. 7g 硼酸 7. 44g Naz-EDTA 工作 浓度 1X BE (26) TE 缓冲 ) 10mmol/L Tris, pH7. 5 lmmol/L EDTA ;, 室温 保存 调节 pH 2 8.0 DNA 保存 (27) TE pw CLE) 10mmol/L Tris, pH7. 5 0. lmmol/L EDTA ; 室温 保存 调节 pH 8.0 DNA 保存 (28) TE-9 缓冲 500mmol/L Tris, pH9. 0 20mmol/L EDTA 10mmoal/L NaCl ; 室温 保存 (29) WAR (1000x) YF 70%2H, 12. 5mg/ml Ain (0. 22ym) 9) Be Tt Be» TRAE F 20°C (30) Tris (1mol/L) Tris 制备 lmol/L 储备 2/3 左右 体积 溶解 调节 PH, 体积 注意 Tris MA Tris-Cl pH 调节 需要 (31) Tris/SDS 缓冲 100mmol/L NaCl Immol/L EDTA 10mmol/L Tris, pH8.5 ; 然后 0.5% SDS 保存 室温 (32) 7K (DEPC ; RNase) ° 366

实验 离子 /蒸馏 ) DEPC 0.05% 0.1% OKRA BO). PETE PURE He tie HE BU) A Be He HE GT a FE a LE RPE 30min 破坏 DEPC, 当心 DEPC 致癌 物质 推荐 安全 DEPC 任何 氨基 溶液 4 (33) YPD 培养 ) : 10g 酵母 20g HA KK 20g 葡萄

附录 3 制备

当心 ”苯酚 仿 挥发 试剂 使 溶剂 必须 安全 使 手套 通风

苯酚 必须 纯化 容易 主要 试剂 那里 非常 合理 价格 苯酚 实验 苯酚 非常 危险 程序 实验 完成 使 那样 非常 使 工作 详情 别处 找到 (Wallace,1987)

实验 程序 购买 ) 苯酚 合适 包装 箱包 ; 必须 直到 首次 使 进行 饱和

苯酚 光敏 迅速 氧化 产物 形成 游离 磷酸 核酸 使 产生 红色 根据 颜色 检查 存在 速率 , 缓冲 苯酚 8- 5 )。 缓冲 制备 体积 氯仿 稳定 苯酚 混合 样品 蛋白 RNA 制备 促进 脂肪 往往 氯仿 苯酚 -氯仿 混合 添加 通常 减少 伴随 产生 蛋白 方法 制备 饱和 苯酚 试剂 缓冲 缓冲 苯酚 : 氯仿 : (25 : 24:1),

举例 : 购买 通常 500g/ 通风 65C 消毒 玻璃 25ml 转移 50ml AREA RA CRA REE REZ MS) 100ml RR GSMA 50ml EH) 若干 207C 避免 苯酚 反复 使 苯酚 试剂 苯酚 融化 描述 方法 规范 制备 程序 饱和 制备 50ml 缓冲 12. 5ml 融化 苯酚 50ml 冷冻 保存

制备 缓冲 , 体积 Tris 缓冲 ) 饱和 体积 25ml。 体积 〈25ml) 氯仿 : RM (24 : 1) 混合 50ml 饱和 缓冲 适合 许多 SHE, RUE HK 0.1% (1g/L); 缓冲 使 基本 策略 任何 体积 缓冲 制备 方便 Sigma 公司 购买 饱和 现成 缓冲 Cat. Nos. P-4557 P-3803)

367 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

3.1 饱和

苯酚 饱和 标准 方法 ,每 方法 标题 若干 改良 方法 方法 Tris 饱和 制备 保持 pH 饱和 储备 ,或 特定 方案 使 制备 具有 特定 pH 缓冲 特别 注意 速率 pH 增高 增高 ,pH 8.0 苯酚 缓冲 使 pH 平衡 缓冲 4C 认为 I~ 稳定 方法 饱和 ,, CAS MAD WH ele pH 严格 场合 饱和 ,, 除非 特定 方案 特殊 需要 饱和 体积 适当 缓冲 乙酸 ,pH 4.5; Chomczynski Sacchi, 1987; 5 ) 混合 达到 pH 仅仅 制备 特定 实验 需要 缓冲 缓冲 关于 垃圾 置办

饱和 苯酚 pH 选择 主要 取决 DNA BERNA, 极其 重要 原则 裂解 pH 依赖 酸性 pH AT, RA@ RNA ; pH ,RNA DNA 保留 (Brawerman ,1972) pH 5.5 ,DNA 选择 保留 界面 RNA 回收 方法 关键 优点 pH 核酸 活性 DNA YF. WATER RAY pH 调节 7.5 工业 标准 pH FG, 非常 防止 样品 作用

溶剂 平衡 合适 pH, 直接 单独 使 氯仿 /或 酸性 pH 裂解 引起 RNA (和 DNA, ) poly(A) mRNA 损失 裂解 缓冲 /或 缓冲 SDS 氯仿 同时 避免 现象

3.2 程序 1: Tris 饱和

当心 手套 防护 眼镜

65C 完全 融化 适量 苯酚

@ 体积 lmol/L Tris, pH 8.0 (或 按照 实际 pH) 选择 TE 缓冲 (10mmol/ML Tris, pH 8.0;,lmmol/L EDTA) Tris-SDS 缓冲 〈100mmol/L NaCl; Immol/L EDTA; 10mmol/L Tris-Cl, pH 8.5; 0.5% SDS) 平衡 体积 缓冲

G@) 混合 台式 离心 简单 离心

观察 底层 确认 任何 苯酚 桃红 因为 存在 体积 优先 吸收

@ 移出 体积 100mmol/L Tris Tris pH 步骤 @D 相同

@ 混合 台式 离心 简单 离心

O 移出 测量 PH。 溶液 pH 7.5, 苯酚 Tris HA, WOR. WR pH 7.5, HERS MERO.

- 368 -

Mt

饱和 苯酚 保存 4"C 体积 氯仿 : BME (24 : 1) 0.1% (lg/L) 8- 混合

3.3 程序 2: 饱和

当心 ”全 必须 防护 眼镜

@ 65C 完全 融化 适量 苯酚

@ 体积 消毒 蒸馏

@ 使 台式 离心 简单 离心

苯酚 保留 作为 饱和

© 饱和 苯酚 4C 体积 氯仿 : ME (24 : 1) 0.1% (1g/L) 8- 混合

3.4 参考 文献

Brawerman, G., Mendecki, J., and Lee, S. Y. (1972). A procedure for the isolation of mam- malian messenger ribonucleic acid. Biochemistry 11, 637.

Chomczynski, P., and Sacchi, N. (1987). Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal. Biochem. 162, 156.

Wallace, D. M. (1987). Large- and small-scale phenol extractions. Methods Enzymol. 152, 33.

附录 4 BEC HEA SYBR 绿 溶液

常用 核酸 染色 CEtBr), SYBR 绿 染料 (MacGregor Johnson,1977) 插入 试剂 核酸 结合 染料 毒性 FORKS; 适当 防止 环境 污染 适当 SYBR 绿 放心 处置。

常见 详细 描述 废弃 方法 (Lunn Sansone, 1987, 1990; Bensaude,1988) 推荐 废弃 漂白 广泛 使 方法 方法 虽然 降低 变性 染料 转变 (Quillardet Hofnung,1988) 替代 方法 接受 任何 方案 作为 实验 FIR CHEM SYBR 绿 标准 方案 工作 浓度 : 0.5 1. Ong/ml,

4-1 电泳 染色 缓冲 除去 SYBR 绿 Schleicher & Schuell Bioscience 公司 提供 369 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

除去 99%

缓冲

残存 EtBr /(ng/ml)

8 4-2 500ng/ml 缓冲 体积 CL). 滤液 残存 浓度 荧光 Schleicher & Schuell Bioscience 公司 提供

SYBR 绿 1X 4X 浓度 染料 稀释 方案

4.1 AR1

方案 (Schleicher Schuell; Cat. No. 448031) SYBR 绿 方案 WA 4-1) 装置 10L 电泳 99%% 4-2)。 充填 活性 根据 厂家 使 安全 废弃 昂贵 方法 实验 使 广泛

4.2 辅助 方案

残存 定量 检测 步骤 〈(Menozzi ,1990)

D 工作 缓冲 染色 缓冲 配制 100wg/ml AY HEY DNA 溶液 线 0 500ng/ml 浓度 范围 稀释

@ lml DNA, 使 100ug/ml。

@) 荧光 标准 溶液 溶液 荧光 读数 波长 526nm, 波长 585mm) 标准 曲线 标准 曲线 溶液 浓度 浓度 4 ng/ml 测定 通常 线性 (r=0. 999).

4.3 方案 2

工作 浓度 、SYBR 绿 相关 染料 溶液 100ml 溶液 3g Am- berlite® XAD-16 (Sigma Cat. No. XAD-16), 污染 (Joshua, 1986; Lunn San- sone, 1987), XP ARE— PER FM RA WIR. MWA FE lal KHRHE 12~16h, # Whatman 1 相当 滤纸 包括 树脂 固体 作为 实验 室内 规定 溶液 排放

4.4 方案 3

100ml 浓度 、SYBR 绿 溶液 100 mg 活性 (Sigma

Anberlit 树脂 Rohm and Hass, Inc. (Philadelphia, PA) 生产

° 370 .

Mt

Cat. No. C-2889) (Bensaude,1988) 室温 间歇 1h, Whatman 1 相当 滤纸 固体 作为 毒物 实验 室内 规定 (policy) 溶液 排放

4.5 参考 文献

Bensaude, O. (1988). Ethidium bromide and safety—readers suggest alternative solutions. [Letter]. Trends Genet. 4, 89.

Joshua, H. (1986). Quantitative absorption of ethidium bromide solutions from aqueous solutions by macroreticular resins. Bio Techniques 4, 207.

Lunn, G., and Sansone, E. B. (1987). Ethidium bromide: Destruction and decontamination of solutions. Anal. Biochem. 162, 453.

Lunn, G., and Sansone, E, B. (1990). Degradation of ethidium bromide in alcohols. BioTechniques 8, 372.

MacGregor, J. T., and Johnson, I. J. (1977). In vitro metabolic activation of ethidium bro- mide and other phenanthridium compounds: mutagenic activity in Salmonella typhimurium. Mutat. Res. 48, 103.

Menozzi, F. D., Michel, A., Pora, H., and Miller, A. O. A. (1990). Absorption method for rapid decontamination of solutions of ethidium bromide and propidium iodide. Chromatographia 29, 167.

Quillardet, P, and Hofnung, M. (1988). Ethidium bromide and safety—readers suggest alternative solutions. Trends Genet. 4, 89.

附录 S$ J DNase RNA 样品 DNA

场合 污染 DNA RNA Fah, FES ZEA PCR 制备 RNA 密度 离心 粗略 污染 样品 方法 昂贵 设备 样品 DNA RNA 毫克 方法 此外, 古老 pH 技巧 RNA DNA 足以 确保 RNA (第 5 ), 微量 密切 接近 DNA. RNA 基础 实验 定量 方面 影响 RNA DNA 共存 引物 往往 RNA 目标 DNA 目标 场合 核酸 脱氧 核糖 核酸 I (RNase-free DNase [| ) 简单 核酸 消化 作用 消除 DNA, 然后 RNA 溶液 直接 使 : 仿 /或 标准 乙醇 沉淀 浓缩 5 ), 方法 纯化 。DNase 方法 制备 DNA To AY RNA, 包括 体外 转录 反应 、DNA 缺口 平移 DNase 足迹 方法 研究 DNA- 蛋白 相互 作用 场合 降解 DNA 模板

商品 RNase DNase 制剂 , 例如 RQ 1 (Promega) 方法 任何 进行 标准 纯化 RNase, 保证 产品 含有 RNase 活性 方法 实验 非常 方便 购买 费用 因为 DNase | 稳定 实验 制备 RNase DNase 没有 简单 方法

5.1 实验 方案

J 怀疑 污染 DNA RNA 样品 RNase DNase 1U/pg 核酸 - 371

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

注意 DNase [在 40mmol/L Tris-Cl (pH 7.9), Immol/L CaCl 5mmol/L MgSO 工作 表现 活性 缓冲 配制 通常 10 反应 缓冲 稀释 购买 提供

注意 2 RNase DNase 活性 通常 单位 〈units) 表述 1U DNase 37° 10min 降解 lpg DNA, 体积 通常 20 50nl。 含有 EDTA, SDS 变性 缓冲 超过 37°C, DNase 强烈 抑制

@ 混合 37C 15 30min。 lh

@ 样品 65°C 保温 10min 终止 反应 方法 EDTA 浓度 2mmol/L, 终止 DNase 活性

注意 PCR (RT-PCR) 推荐 EDTA 终止 反应 常会 提供 停止 反应 缓冲 (EGTA).

变性 电泳 样品 样品 DNA 消化 程度 RNA 完整

@ RNA 直接 RT-PCR.

附录 6 J RNase DNA 样品 RNA

场合 基因 DNA (附录 11) 设计 需要 损伤 DNA 完整 污染 RNA。 场合 , RNase 储备 使 必须 清除 储备 DNase 活性 附录 5 指出 那样 密度 离心 污染 样品 , 方法 设备 DNA RNA 样品 方法 , DNase RNase 简单 完成 任务 制造 鉴定 DNase RNase DNase 活性 RNase 专门 , 含有 定量 DNase (Gillespie Spiegelman, 1965), .

4M DNase 清除 RNase 活性 , 生物 实验 制备 DNase RNase。 RNase RNase A fil RNase Ti 程序 仅仅 自制 制备 商品 RNase 直接 使

6.1 实验 方案 : RNase 清除 DNase 活性

© TE 缓冲 (10mmolL Tris-Cl; lmmol/L EDTA, pH8.0) 配制 RNase A, RNase Ti, 混合 10mgy/ml 储备

@ RNase 储备 接近 沸点 〈90C) 10min。

注意 ”虽然 RNase 制剂 煮沸 保存 显著 RNase 活性 鼓励 特殊 情况 使 方法 ; 90C DNase 活性 迅速 清除 试剂 RNase 活性 没有 损害

6.2 实验 方案 : RNA 消化

D DNase RNase 样品 浓度 10wgy/ml。 @O 37 保温 10~30min, @ 体积 苯酚 : 氯仿 (1 : 1) 苯酚 : 氯仿 : (25 : 24 : 1) HAE RNase 消化 作用 ® 乙醇 沉淀 浓缩 DNA, 直接 限制 消化 反应 、PCR © 基因 DNA 4C , 质粒 DNA 20 保存 372

6.3 参考 文献

Gillespie, D., and Spiegelman, S. (1965). A quantitative assay for DNA-RNA hybrids with DNA immobilized on a membrane. J. Mol. Biol. 12, 829.

Le ee ee

VFB ot FE SE AB es AF REA OE A AT A. 因此 杂交 核酸 变性 达到 效果 使 必须 离子 介绍 常用 离子 方法

常用 生物 试剂 离子 试剂 少量 混合 树脂 (Sigma; Cata- log No. M-8032) 混合 阴离子 阳离子 交换 树脂 强酸 促使 离子 。50ml 离子 试剂 Se 混合 树脂 ,旋转 混合 2 3min。 树脂 容量 达到 , 颜色 金色 离子 30min 完成 需要 树脂 离心 树脂 离子 BARAT 20°C; 离子 酰胺 甲醛 离子 尽快 使 离子 试剂 打开

选择 方法 酰胺 AG 501-X8 混合 树脂 (Bio-Rad), AG 501-X8 树脂 1: 1 AY AG 1-X8 -COH ) AG 50W-X8 树脂 CH) 混合 leg 离子 试剂 AG 501-X8 树脂 1g。 离子 需要 1h 左右 , 保留 离子 试剂 保存 备用 。Bio-Rad AG 501-X8 树脂 没有 连接 染料 离子 进行 显示 颜色 变化

附录 8 ”硅烷 离心 玻璃

核酸 固有 样品 回收 硅烷 玻璃 LEAS AM RAE). Bld. HEGEL Corex Pyrex 玻璃 试管 微量 离心 核酸 cDNA 许多 ,使 RNA 损失 避免 RNA 损失 样品 硅烷 特别

8.1 实验 方案

Sigmacote (Sigma; Cat. No. SL-2) 非常 硅烷 试剂 迅速 硅烷 塑料 。Sigmacote 特殊 接触 表面 形成 紧密 薄膜

J 保证 按照 制造 关于 Sigmacote 安全 使 操作

@ Sigmacote 覆盖 管子 避免 浸染 , 因为 外面 非常 光滑

@ HES Sigmacote 管子 空气 干燥 , 5 10min 完成 表面 基本

注意 湿 ,Sigmacote 重复 使

附录 9 主流 工具 离心

离心 技术 依据 事实 圆周 运动 物体 方向 *。 373

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

离心 支配 通常 术语 表示 [相关 离心 CRCEF) g 倍数 ], 旋转 半径 角速度 直接 函数 缺少 方法 根据 物体 密度 溶液 包括 质粒 )。 设备 .在 许多 实验 使 恰当 操作 保养 引起 永久 损害 糟糕 特别 使 超速 离心 使 责任 离心 离心 设计 范围 操作 包括 减速 按照 购买 手册 方法 进行 PRE

9.1 离心

(1) 台式 临床 离心

室温 操作 3000r/min (2) 离心

通常 冷冻 情况 操作 20000~25000r/min (3) 台式 微量 离心 (Microfuges)

转速 14000r/min (12000Xg)。

体积 核酸 样品 缺少

(4) 超速 离心

转速 500000Xg (75000r/min, r=8cm),

严格 按照 密度

真空 操作

9.2 离心 设计 满足 要求 特殊 需要 参数 包括 温度 、RCF、 线性 阶段 )、 密度 梯度

角度 9-1), 样品 离心 固定 角度 翻转 (swinging-bucket) 9-2), 样品 离心 摆动

9-1 固定 角度 离心 保持 9-2 ”翻转 样品 固定 角度 Sorvall 公司 提供 摆动 旋转 轴线 90* Sorvall 公司 提供 + 374

转轴 线 90 整个 离心 保持 样品 直立 旋转 轴线 垂直 ,完全 取决 设计 方案 角度 适用 离心 技术 翻转 垂直 梯度

比较 方法 比较 它们 因子 & 比较 效率 颗粒 沉降 系数 , & 估计 沉淀 ,A 表明 颗粒 移动 离心 底部 需要 , 因子 效率 9-1 9-2 提供 常用 特征

9-1 Sorvall 公司 制备 翻转 技术 规格

SLA BABE | wk RCF/X¢ X 额定 体积 | BEFORE /r* min /ml

258826

RP55-S

$55-S 258826 J TH-660 488576 121.5 AH-650 296005 106.0 TH-641 287660 SIR

SureSpin 630(17ml) 166880 166. 0 SureSpin 630(36ml) 166880 166.0 AH-629(17ml) 155846 165.0 AH-629(20ml) 121464 129.3 AH-629(36ml) 151243 161.0

:Kendro Laboratory Products (www. sorvall. com) 提供 数据 。RCF ,相关 离心

9-2 Beckman 公司 制备 翻转 超速 离心 技术 规格

半径 (rmax)

/mm

速度 RCF RX | 额定 容量 放任 /r* min! 体积 /ml

421000 89.0

SW 60Ti 485000 ] 120.3 SW 55Ti 368000 0 109. 0 SW 50.1 30000 99.7 LOvess SW 41Ti 288000 67.0 152.0 SW 40Ti 285000 66.7 158. 8 SW 30.1 124000 79.3 123.0 SW 30 124000 79. 3 123. 0 SW 28.1 150000 72.9 ili he SW 28 141000 75. 3 161.0 SW,.25n2 107000 66.7 152°3 90400 2 129.2

YE : Beckman Coulter Co. (www. beckman. com) 提供 数据 。RCF 相关 离心

9.3 9

生物 实验 RNA 步骤 离心 技术 , 包括 细胞 获得 完整 细胞 沉淀 ,在 核酸 使 , 密度 梯度 乙醇 沉淀 浓缩 核酸

© Griffith (1986) 375

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

9.4 离心

离心 样品 简单 直接 离心 技术 方法 均一 样品 混合 离心 进行 简单 离心 30min) 运作 结束 , 沉淀 含有 离心 污染 开始 接近 物质 ; 沉淀 非常 坚实 情况 装置 仔细 除去 , 离心 离心 离心 需要 间或 速度 沉淀

9.5 密度 梯度 离心 -沉降 速度

比较 复杂 制备 技术 密度 梯度 离心 , 样品 颗粒 通过 密度 梯度 达到 密度 管子 顶部 ,密度 逐步 增加 密度 梯度 沉降 速度 离心 速率 , 样品 梯度 顶部 离心 作用 颗粒 开始 通过 连续 梯度 移动 ; 移动 速度 颗粒 沉降 速度 特征 浮力 密度 离心 平缓 沉降 速度 离心 需要

@ 样品 颗粒 密度 必须 梯度 密度

Q 任何 密度 ) 离心 。,

举例 : FRAN fi) RNA 样品 通过 梯度 离心 《Benecke 1978; Nevins Darnell,1978) 蔗糖 梯度 平缓 5% ~ 20%, BEUK AY ZE 5% ~ 40%; 5%% 40%% 场合 提高 离心 速度 改善 定义 WER. RNA 根据 它们 沉降 速度 移动 通过 梯度 ,RNA 根据 整个 梯度 作为 方法 梯度 RNA

9.6 密度 梯度 离心 -等 密度 技术

密度 梯度 密度 密度 密度 平衡 离心 颗粒 梯度 移动 颗粒 密度 相等 梯度 密度 密度 颗粒 悬浮 那里 形成 沉降 速度 离心 离心 导致 样品 继续 通过 梯度 迁移 ,最 重要 必须 超过 目的 颗粒 密度 非常 紧密 形成 沉淀 仅仅 迁移 它们 密度 常用 物质 包括 CsCl. Cs2SOu CsTFA。 史上 研究 〈Meselson ,1957; Meselson Stahl, 1958), 构建 密度 范围 直到 1. 8g/cms 梯度 。CszSO4 CsTFA 形成 CsCl 梯度 陡峭 梯度 梯度 相差 1 ; 适宜 浮力 密度 DNA.

浮力 密度 梯度 需要 制作 ,CsCl 直接 核酸 混合 (染色 DNA, RNA, & AUR. JR, DNA). AA HRA BEA. BRR OM, 离心 力作 梯度 物质 重新 超速 离心 速度 形成 密度 自身 形成 梯度 需要 微量 超速 离心 明显 缩短 离心 运转 产生 线性 梯度 根据 它们 密度 沉降 悬浮 它们 密度

- 376 -

9.7 参考 文献

Benecke, B. J., Ben-Ze’ev, A., and Penman, S. (1978). The control of mRNA production, translation, and turnover in suspended and reattached anchorage-dependent fibro- blasts. Cell 14, 931.

Griffith, O. M. (1986). “Techniques of Preparative, Zonal, and Continuous Flow Ultracentrifugation.” Beckman Instruments, Inc., Palo Alto, CA.

Meselson, M., and Stahl, F. W. (1958). The replication of DNA in E. coli. Proc. Natl. Acad. Sci. 44, 671.

Meselson, M., Stahl, F. W., and Vinograd, J. (1957). Equilibrium sedimentation of macro- molecules in density gradients. Proc. Natl. Acad. Sci. 43, 581.

Nevins, J. R., and Darnell, J. E. (1978). Steps in the processing of Ad2 mRNA: Poly (A)* nuclear sequences are conserved and poly(A)* addition precedes splicing. Ce// 15, 1477.

附录 LO JAG SE PTS Ae 2a HD 125

生物 材料 制备 核酸 细胞 裂解 破碎 情况 直接 裂解 含有 生长 细胞 培养 培养 方法 往往 需要 体积 裂解 缓冲 培养 收集 裂解 细胞 体积 .。 悬浮 培养 简单 离心 培养 细胞 制备 RNA DNA 实验 常规 使 方法

10.1 实验 方案

培养 生长 培养 保存 方便 直接 15ml 50ml 圆锥

1 磷酸 缓冲 生理 盐水 (PBS)、 缓冲 CCMF-PBS) 细胞 2 PBS.

注意 1XPBS( )=8g NaCl, 0. 23 KCl, 1. 15g Na, HPO, 0. 2g KH PO, PBS 使 稀释

@ 1-75 BAF PIA 2ml 1X 蛋白 -EDTA。 30 60s。 细胞 程度 蛋白酶 温度 细胞 开始 必须 组织 HP AY BR aE A BB .

注意 10X 蛋白 -EDTA=0.5%% 蛋白 ,0.2%EDTA, 购买 1XPBS 稀释 10 -EDTA 储备 购买 1X -EDTA 直接 使

® 蛋白酶 形态 情况 )

注意 ”在 没有 培养 显微镜 培养 窗口 实验 光源 估计 细胞 细胞 折射 @ 生变 , 细胞 附着 云雾 范围 取决 培养 程度 细胞 密度 重要 培养 蛋白 消化 , 因为 导致 早熟 细胞 裂解 明显 损失 RNA DNA,

O 手掌 打击 培养 基底 细胞 没有 完全 手掌 培养 37°C Hild 60s。 打击 培养 确保

@ 折射 光线 空气 通过 介质 细胞 ) 弯曲 角度 ”377 =

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

注意 ”完全 细胞 必须 打击 培养 3 4 细胞 仍然 附着 它们 接触 PBS 细胞 培养 才能 消化 消化 保留 培养 介质 (上 ), 细胞 细胞 保存 直到 细胞 群体 消化 细胞 普通 管子

© 细胞 培养 5ml 步骤 保存 培养 残留 蛋白

注意 有些 培养 极度 敏感 场合 制剂 使 细胞 悬浮 血清 培养 参考 提供 培养 配制 信息

© 悬浮 转移 合适 离心 ,150Xg 200Xg 离心 3 5min。

Q@ 离心 完全 确保 裂解 缓冲 关键 稀释 残留 培养 生变 , 非常 必要 培养 PBS 细胞 沉淀 重复 步骤 步骤 @@)

@ 促进 细胞 裂解 缓冲 试剂 悬浮 @ 裂解 缓冲 细胞 管子 非常 实验 , 裂解 缓冲 即将 细胞 管子 沿 微量 离心 拖拉 2 3 帮助 细胞 沉淀 破碎

附录 11 DNA

Miller (1988) 建立 溶剂 (CHMW) DNA 方法 方法 改良 方法 方法 明了 HMW DNA 回收 , 包括 透析 〈Long- mire ,1987) 使 滤器 (Leadon Cerutti,1982) 工程 产品 销售 提供 广 试剂 方法 叙述 方法 依据

方法 相对 简单 细胞 蛋白 开始 蛋白 , 接着 饱和 NaCl 溶液 沉淀 蛋白 ;随后 蛋白 基因 DNA, 标准 乙醇 沉淀 回收 ;该 方法 血细胞 DNA (Miller ,1988) 实验 方法 DNA, 样品 消化 细胞 (Farrell,1991 2004; )。 实验 基因 DNA 通常 苯酚 : 氯仿 纯化 平均 10 15%。 紫外 扫描 检查 Arco /Acso (第 8 ) 方法 DNA HAE SEB: 仿 白质 技术 。-

11.1 实验 方案

D 收获 细胞 15ml 离心 ,200Xg 离心 5min。 使 〈1 2) 107 细胞

@ 体积 4.5 ml TE-9 裂解 缓冲 (500mmol/L Tris-Cl, pH 9.0; 20mmol/L EDTA; 10mmol/L NaCl) 彻底 悬浮 细胞 沉淀 2X107 AAA).

选择 方案 : PBS® 沉淀 裂解 缓冲 离心

注意 1 裂解 缓冲 pH 符合 需要 诱导 样品 RNA

@ 1X PBS(# Ft) =8g NaCl,0. 2g KCI,1. 15g NazHPO 0.2g KH2PO, 制备 储备 使 稀释

aa 378

足以 引起 DNA 严重 变性 1 )。

注意 2 ”对 少数 没有 细胞 数目 试剂 体积 比例 缩减

@ 裂解 500n1 10 SDS。 试管 激烈 混合

125wl 20mg/ml Hh BARK ( 0.5mg/ml), 试管 激烈 混合 48°C 保温 4 20h。

注意 “加 蛋白 K 必要 蛋白 除去 蛋白 蛋白 DNA 纯化 干扰 DNA 消化

© 保温 结束 1. 5ml 饱和 NaCl WR (4 6mol/L). MARE 15s。 放置 1 2min 观察 裂解 状况 适当 沉淀 使 裂解 非常 模糊 混浊 状况

注意 ”加 饱和 NaCl 溶液 使 脱水 技术 激烈 试管 1Imin 裂解 澄清 彻底 200ml 饱和 NaCl 溶液 , tHE. H+ 观察 裂解 状况 重复 饱和 NaCl 溶液 直到 裂解 保持 混浊 状态 使 Al NaCl 溶液 , 因为 固体 NaCl 析出 溶液 导致 DNA

© Wyk 1000X g~1500X g 离心 10min。 离心 超过 推荐

G@ 15ml 管子 SDS 蛋白质。 10min,

DNA) 50ml 圆锥 , , 蛋白 蛋白

© 2 体积 室温 95%% 使 离心 旋转 DNA 沉淀

注意 ”这 推荐 室温 乙醇 因为 DNA 沉淀 ; 冰冷 乙醇 残存 RNA 沉淀

@ 硅烷 〈Sigmacote 非常 ; 附录 8) 回收 DNA。 确保 DNA 硅烷 DNA 沉淀 500Xg 离心 Imin 方法 DNA 进一步 转移 微量 离心

HB 场合 尖端 弯曲 火焰 ) DNA. 因为 DNA 牢固 黏着 玻璃 表面 , 硅烷 必需

@ 500pl 70%% DNA 3 残留 95%% i DNA 沉淀 干燥 DNA 完全 干燥

@ 使 DNA , 包括 测定 浓度 纯度 , 100 200nl TE 缓冲 (10mmol/ L Tris-Cl, pH7.5; lmmol/LEDTA) 完全 溶解 DNA。 基因 DNA 样品 保存 45C

注意 1 45 50C 样品 DNA 溶解 .如 37 保温 促进 DNase HE. EA NES, 纯化 基因 DNA 样品 4C 溶解

注意 2 除了 紫外 , 样品 完整 电泳 评估 ,250 500ng 样品 A Hind [tree te) 电泳

@ DNase RNase 沉淀 DNA. ERR hy) RNA,

@ 纯化 DNA 4°C fRFF. RAT BES Ha HE PF ah AY SE EE

379 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

11.2 参考 文献

Leadon, S. A., and Cerutti, P A. (1982). A rapid and mild procedure for the isolation of DNA from mammalian cells. Anal. Biochem. 120, 282.

Longmire, J., Albright, K., Lewis, A., Meincke, L., and Hildebrand, C. (1987). A rapid and simple method for the isolation of high molecular weight cellular and chromosome-spe- cific DNA in solution with the use of organic solvents. Nucleic Acids Res. 15, 859.

Miller, S. A., Dykes, D. D., and Polesky, H. F. (1988). A simple salting out procedure for extracting DNA from nucleated cells. Nucleic Acids Res. 16, 1215.

附录 12 ”从 植物 RNA

植物 制备 mRNA 动物 制备 mRNA 共同 许多 场合 植物 mRNA 具有 明显 稳定 植物 基因 表达 研究 涉及 许多 主要 研究 , 植物 RNA 技术 范围 读者 参阅 参考 资料 :

Ainsworth, C. (1994). Isolation of RNA from flora tissue of Rumex acetosa. Plant Mol.

Biol. Rep. 12, 198.

Chang, S., Puryear, J., and Cairney, J. (1993). A simple and efficient method for isolating RNA from pine trees. Plant Mol. Biol. Rep. 11, 113.

Graham, G. C. (1993). A method for extractions of total RNA from Pinus radiata and other conifers. Plant Mol. Biol. Rep. 11, 32.

Green, M. J., Thompson, D. A., and MacKenzie, D. J. (1999). Easy and efficient DNA extraction from woody plants for the detection of phytoplasmas by polymerase chain reaction. Plant Dis. 83, 482-485

Lewinsohn, E., Steele, C. L., and Croteau, R. (1994). Simple isolation of functional RNA from woody stems of gymnosperms. Plant Mol. Biol. Rep. 12, 20.

Logemann, J., Schell, J., and Willmitzer, L. (1987). Improved method for the isolation of RNA from plant tissues. Anal. Biochem. 163, 16.

Lopez-Gomez, R., and Gomez-Lim, M. A. (1992). A method for extracting intact RNA from fruits rich in polysaccharides using ripe mango mesocarp. Hort. Sci. 27, 440.

Mitra, D., and Kootstra, A. (1993). Isolation of RNA from apple skin. Plant Mol. Biol. Rep. 11, 326.

Palmiter, R. D. (1974). Magnesium precipitation of ribonucleoprotein complexes: Expedient techniques for the isolation of undegraded polysomes and messenger ribonu- cleic acid. Biochemistry 13, 3606.

Soni, R., and Murray, J. A. H. (1994). Isolation of intact DNA and RNA from plant tis- sues. Anal. Biochem. 218, 474.

Strommer, J., Gregerson, R., and Vayada, M. (1993). Isolation and characterization of plant mRNA. Jn “Methods in Plant Molecular Biology and Biotechnology” (B. R. Glick and J. E. Thompson, Eds.). CRC Press, Boca Raton, FL.

Wallace, D. M. (1987). Precipitation of nucleic acids. Methods Enzymol. 152, 41.

Wan, C. Y., and Wilkens, T. A. (1994). A modified hot borate method significantly enhances the yield of high quality RNA from cotton. Anal. Biochem. 223, 7.

附录 13 ”电泳 原理 安全

电泳 电场 迅速 带电 生物 白质 碳水 ) - 380 -

””

技术 蛋白 环境 pH REEMA; 电泳 使 任何 pH 环境 表现 负电 电泳 标准 定性 定量 表示 样品 特征 测定 样品 纯度 方法 密度 梯度 离心 ) 比较 快速 提供 密度 梯度 离心 印迹 目的 RNA 分子。 核酸 借助 直接 观察 检查 ; 样品 完整 提供 评估 方法 情况 方法 回收 特定 随后 鉴定 浓缩 RNA DNA 物质 电泳 参数 使 相同 移动

历史 ,这 技术 涉及 蔗糖 方面 改进 使 电泳 淀粉 丙烯 酰胺 访 结构 影响 目标 迁移 人们 酰胺 核酸 电泳 必需 使 Me RE IE AR BY FR PS a EE 〈2.5%), 浓度 酰胺 稳定 妨碍 广泛 海藻 提出 线性 ) NERA 酰胺 (Peacock Dingman, 1968; Dahlberg ,1969) 物理 强度 核酸 琼脂 获得 满意 结果 使 取决 样品 范围 核酸 电泳 标准 基质 琼脂 ARCHES. i HE FEE HEAR EF ET RNA 电泳 情况 ,RNA 双向 电泳 鉴定 KEI NL DeWachter ,1990 )

13.1 理论 描述 9

带电 蔗糖 理论 行为 ; 实际 描述 参数 包括 带电 确切 行为 电学 方面 展开 理解 什么 电泳 怎么 电泳 知识 必要

电场 (FE) 取决 (9) 电场 强度 CE/d). PU:

Eq

Mig

Gis gai,

“下 电极 电位 ; d 电极 距离 现实 阻力 电极 迁移 方向 相反 摩擦 CF) 取决 形状 ,”) 介质 黏度 〈7); 移动 速度 F=6xrqu (13-2) 合并 (13-1) (13-2) :

Eq _. 6rr7 (13-3)

代数 重新 整理 电场 移动 速度 : pte x d6xrn

1: (13-1) (13-4) 移动 速度 电场 强度 正比

(13-4)

@ 改编 Hoefer Pharmacia Biotech, - 381 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

溶液 黏度 硬度 ) 反比 参数 知识 理解 电泳 基础 先是 欧姆 定律 TI, ) 电压 ) 正比 电阻 CR, Rea) 反比 : I=E/R (13-5) 功率 (CP, RED). POPU ie. CHE CE, REP) A CU, BH) 乘积 表达 : P=EI (13-6) (13-5) BS) EW IR FRA, Wst3-6) 表达 : P=[?R (13-7) 电泳 参数 保持 稳定 功率 BIS BEES. 温度 波动 造成 结果 © 选择 电流 电流 正比 移动 速度 保持 恒定 @ 选择 移动 速度 电泳 增加 @ 选择 移动 速度 电泳 没有 相关 变化 2: 温度 调节 整个 电泳 需要 关注 进行 琼脂 电泳 使 非常 融化 维持 恒定 温度 非常 电流 阴极 流向 阳极 反应 :

阴极 反应 2e- +2H,O—»20H- +H, HA+OH-—=A- +H,0

阳极 反应 H,O—»2H+ ++0,+2e Hs A- ——

反应 HET RE NC RH, BOR TEBE EE AL, lmol 氢气 产生 0. 5mol 氧气 观察 阳极 产生 气泡 阴极 确定 电极 正确 连接 肯定 表明 电流 简单 标志

13.2 典型 电泳

RNA 电泳 方法 任意 方法 共同 特点 RNA 相对 体积 〈20ml ) 变性 琼脂 决定 时间。 当然, 支配 参数 适用 因子 影响 核酸 (Rodbard Chambach, 1970); 实验 泳装 标准 实验 格式 数据 重复

13.3 基质 选择

琼脂 丙烯 酰胺 显示 张力 强度 Fa + 琼脂 研究 范围 核酸 13-1), BTR 比较 允许 核酸 蛋白质 甚至 蛋白 复合 巨大 丙烯 酰胺 平均 蛋白 。382 -

a

HR. REAR RMT RAB. BERR, CAS PERE 77 BERGE. BRAG BE BEB 电泳 150 50000 〈50kb) 核酸 琼脂 精确 电场 脉冲 电场 )。 5 10 500 600 核酸 考虑 核酸 理解

13-1 核酸 电泳 丙烯 酰胺 范围 9

1000~ 20000® 600~ 10000 500~9000 300~ 6000 200~3000

琼脂 2

100~1500 80~500 60~ 400 40~ 200 25~150 6~100

丙烯 酰胺 @

© 数据 Sambrook Russell (2001), Ogden Adams (1987), Farrell (1993). @ 3%% 琼脂 观察 PCR 产物 (100~500bp).

@ 脉冲 电场 电泳 比较 DNA

@ : 丙烯 酰胺 : N,N“- 丙烯 酰胺 19 : 1。

当心 聚合 形式 丙烯 酰胺 神经 毒素 制备 操作 丙烯 酰胺 帮助

现在 方便 许多 供应 预制 现货 供应 标准 电泳 基本 简单

形状 琼脂 平板 灌注 电泳 合适 琼脂 灌注 装置 适应 琼脂 特性 磨砂 玻璃 附着 物理 强度 垂直 装置 几乎 电泳 灌注 圆柱 固定 电极 缓冲 缓冲 通过 电流 琼脂 完全 浸泡 电解 缓冲 体积 必须 完全 覆盖 室温 电压 相当 适度 散热

设计 需要 电泳 RNA 印迹 转移 传统 Northern 选择 琼脂 作为 基质 ,RNA (Southern DNA) 完全 印迹 琼脂 电泳 问题 污染 琼脂 困难 广 使 纯度 熔点 琼脂 避免

13.4 琼脂 纯度

琼脂 纯化 商业 生物 983

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

试剂 许多 丙酮 硫酸 离子 (它们 产生 ) 使 污染 ) UR 完全 没有 核酸 活性 质量 生物 琼脂 污染 干扰 回收 核酸 DNA) 纯度 琼脂 SeaKem NuSieve (Cambrex Bio Science) 没有 核酸 活性 污染 特殊 琼脂 温度 琼脂 现货 供应 参考 (DNA 指南 (Your Complete Guide for DNA Separation and Analysis) , Cambrex (800-341-1574; formerly FMC BioProducts) 指南 优秀 实验

13.5 琼脂

琼脂 浓度 硬度 ) 影响 迁移 速度 ; 任何 迁移 琼脂 变化 因为 琼脂 取决 琼脂 浓度 几乎 范围 速度 线性 非常 线性 范围 情况 误差 线 范围 标准 比较 评估 染料 “前 沿 定量 弥散 物质 1%% 琼脂 特别 注意 琼脂 工作 浓度 0. 6 1.5 特殊 情况 3 琼脂 PCR 产物 )

13.6 RA MRA RE

AR VAS Me HC aE We He HE CB BEBE AS & AD TK SRE. TERETE a RB TA as BB 聚合 支持 结构 常用 N,N - bis。 偶尔 特殊 溶解 预先 决定 丙烯 酰胺 : @ 酰胺 百分数 ; 数量 目的 诱导 丙烯 酰胺 聚合 研究 材料 制备 电泳 限制

13.7 样品

核酸 速度 构成 基数 (对 DNA DNA : RNA 杂交 ) logio Mik. MI, ATMA, BRAM (或 拖拉 系数 ) 表现 基质 几何 形状 〈Helling ,1974) 2 标准 核酸 logie 它们 迁移 距离 cm) [ ) 距离 ] 构建 电泳 RNA 标准 曲线

13.8 核酸

DNA 迁移 程度 拓扑 影响 CH, Sambrook Russell, 2001), RNA

@ PETS Hi OE He Sk BP AE 6 th BS EW Fae HB HE FFD STAT By Pe BL ak Ho EE . 384 .

Mt

电泳 行为 结构 影响 改变 变性 RNA AAW BRN RR. AS a te 同类 RNA ,RNA 电泳 常规 变性 进行 10 )。

13.9 电压

散热 直接 确定 电压 比较 电压 电泳 直接 冷却 电泳 结构 直接 功能 例如 散热 电泳 相当 厚度 玻璃 许多 场合 需要 电泳 周围 冷却 保持 足够 温度 平整 设计 装置 配备 管道 电压 而且 系统 融化 电极 5V/cm 电泳 ; 当然 电压 电泳 (2~10kb 范围 ) 保持 参数 需要 冷却 系统

13.10 RUC

当心 ”省 强烈 突变 必须 当心 制造 指南 附录 4。

DNA 形式 存在 电泳 迁移 影响 DNA Ala], RNA 结构 因为 琼脂 电泳 缓冲 受到 影响 使 〈10mg/ml 储备 ) 稀释 0.5pg/ml。 样品 迁移 速度 15% 结束 染色 脱色 容易 忙乱 担心 Northern 印迹 Southern 印迹 RNA fl DNA 转移 效率 直接 确定 缓冲 否则 因此 染料 原因 ,RNA 电泳 样品 负极 正极 移动 正极 负极 移动 完整 电泳 缓冲 必需 电泳 互相 相反 电极 迁移 优点 缺点 染料 讨论 1m.

13.11 SYBR &

当心 SYBR 绿 那样 具有 突变 核酸 结合 染料 按照 制造 指南 心地 详情 4。

相关 染料 SYBR &I. SYBRATALSYBR “〈 ), 核酸 电泳 广泛 使 ,SYBR 染料 具有 明显 优点 灵敏 背景 突变 ; 差异 10 详尽 讨论

任何 SYBR 染料 融化 合适 染料 RNA DNA 迁移 模式 负面 影响 SYBR 绿 电泳 显示 模糊 规则 常常 附近 现象 似乎 浓度 SYBR 绿 电压 笔者 实验 电泳 SYBR 绿 SYBR

385 .

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

13. 12 温度

酰胺 琼脂 迁移 它们 影响 琼脂 电泳 行为 4C 室温 估量 变化 担心 样品 常规 室温 进行 琼脂

13.13 电场 方向

常规 电泳 方向 电场 核酸 使 脉冲 电场 进行 电泳 方法 限制 (Schwartz ,1982) 技术 迫使 DNA 周期 适应 电场 方向 转向 方向 方法 0. 1 10MP DNA 完整 染色 重复 RNA 电泳 RNA

13.14 电泳

历史 琼脂 平板 电泳 因为 琼脂 张力 强度 配置 使 完全 支持 浓度 方便 范围 核酸 样品 设计 规格 电泳 购买 疑问 值得 坚固 耐用 电泳 电泳 正常 实验 磨损 丙烯 酰胺 那样 毒性 容易 工作 毒性 变性 通风 ss 进行 电泳

实际 开口 密封 保留 融化 琼脂 直到 固化 设计 结构 橡胶 垫圈 灌注 电泳 方向 99", 电泳 密封 13-1) 设计 需要 胶带 排除 老式 灌注 现象

13-1 垫圈 电泳 梳子 定位 琼脂 固化 灌注 盘旋 90`, 形成 电场 方向 。Owl Separation Systems Hi

比较 电泳 具有 梳子 数目 齿 Imm、1. 5mm、2mm 3mm 产生 10 20 购买 缓冲 调节 缓冲 循环 端口 电泳 : 例如 *, 386 -

Mt Ar

磷酸 抵抗 pH 变化 缓冲 电泳 酸化 RNA (第 10 ) 那样 形成 pH 梯度 关键

13.15 电泳 安全 问题

安全 必须 涉及 电泳 装置 选择 因素 电泳 电源 插座 接触 电源 企图 修改 电泳 电源 设计 改变 操作 实验 同事 重大 风险 系统 电流 打开 移动 盖子 设计 盖子 接近 电泳 电流 允许 安全 电泳 恢复 电流 继续 电泳 复位 接近 电泳 检查 系统 电源 开导 线 接头 电源 配置 接纳 导线 接头 导线 接头 连接 电源 电源 ;把 导线 接头 ( ) 连接 运行 电源 电源 连接 恰当 打开 任何 导线 接头 确认 电源 关闭 导线 接头 造成 触电

13. 16 电泳 装置 维护

实验 例行公事 优质 电泳 电源 需要 投入 美元 因为 潜在 危险 忽视 仪器 保养 仪器 基本 维护 强制

电泳 电泳 电源 合理 维护 使 重要 事情 实验 清楚 作者 责任 必须 固定 程序 检查 电线 电极 防止 潜在 威胁 生命 伤害

常见 问题 电源 接头 绝缘 导线 接头 裸露 导线 状况 具有 严重 电击 休克 危险 花费 制造 置换 绝缘 导线 仪器 预定 值得 电源 线 螺旋 密封 垫圈 规定 电泳 仪器 维护 详细 制度 Landers (1990),

13.17 ”参考 文献

Dahlberg, A. E., Dingman, C. W., and Peacock, A. C. (1969). Electrophoretic characteri- zation of bacterial polysomes in agarose-acrylamide composite gels. J Mol. Biol. 41, 139.

DeWachter, R., Maniloff, J., and Fiers, W. (1990). Two-dimensional get electrophoresis of nucleic acids. Jn “Gel Electrophoresis of Nucleic Acids—A Practical Approach” (D. Rickwood and B. D. Hames, Eds.). IRL Press, Washington, DC. pp. 151-200.

Farrell, R. E., Jr. (1993). “RNA Methodologies. A Laboratory Guide for Isolation and Characterization.” Academic Press, San Diego, CA.

Helling, R. B., Goodman, H. M., and Boyer, H. W. (1974). Analysis of R. EcoRI fragments of DNA from lambdoid bacteriophages and other viruses by agarose-gel electrophore- sis. J. Virol. 14, 1235.

Landers, T. (1990). Electrophoresis apparatus maintenance. Focus 12(2), 54.

Ogden, R. C., and Adams, D. A. (1987). Electrophoresis in agarose and acrylamide gels.

387 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Methods Enzymol. 152, 61. Peacock, A. C., and Dingman, C. W. (1968). Molecular weight estimation and separation

of ribonucleic acid by electrophoresis in agarose- -acrylamide composite gels.

Biochemistry 7, 688. Rodbard, D., and Chambach, A. (1970). Unified theory for gel cero and gel fil-

tration. Proc. Natl. Acad. Sci. 65, 970. Sambrook, J., and Russell, D. W. (Eds.). (2001). “Molecular Cloning: A Laboratory Manual,” 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY. Schwartz, D. C., Saffran, W., Welsh, J., Haas, R., Goldenberg, M., and Cantor, C. R. (1982). New techniques for purifying large DNAs and studying their Seat and packaging. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 47, 189.

附录 14 A Va Te PDE Hee Oak We FEL dak

当心 LA AMMRE AER ROHBZA, CREAZMNKRKAK, HERA TY 认为 聚合 丙烯 酰胺 健康 熟悉 安全 制备 使 方法 技术 现在 实验 购买 预制 琴师 酰胺 使

丙烯 酰胺 合生 丙烯 酰胺 8@8, 线性 N,N“- 丙烯 酰胺 Chis) 丙烯 酰胺 直接 丙烯 酰胺 浓度 丙烯 酰胺 N,N“- 丙烯 酰胺 比例

因为 氧气 抑制 聚合 反应 混合 空气 混合 惰性 真空

平板 顶部 形成 忽略 平整 顶部 引起 变形 消除 混合 表面 心地 饱和 完成 流出 平整 表面 除了 表面 抑制 聚合 反应 氧气 接触

方法 预测 方法 调节 丙烯 酰胺 百分比 丙烯 质量 ,20%T 20% (200g/L) 丙烯 酰胺 bis。%% 增加 孔径

调节 孔径 方法 改变 百分比 表示 C。 ,20%T 5%Cos 20% 〈200g/L) 丙烯 酰胺 bis. Tn A bis SA 酰胺 质量 5 现任 %% 5 形成 孔径 5 孔径 研究 材料 制备 梯度 梯度 孔径 底部 电泳 限制

酰胺 聚合 方法 光化学 方法 常用 方法 硫酸 TEMED (CN,N,N ,N- ) 催化 光化学 方法 使 TEMED。 荧光 光源 波长 紫外 线 光化学 反应

© Hoefer Pharmacia Biotech 允许 改编 - 388 -

A |

FABRE FE RIE «A A ST a 1 I BY al. AR TTI ik A F RNA 测量

聚合 反应 厉害 聚合 形成 结构 防止 催化 浓度 20 60min 完成 聚合

14.1

常规 RNA 丙烯 酰胺 电泳 变性 酰胺 浓度 98%) 尿素 浓度 7mol/L), 选择 主要 取决 样品 200 TRAN. Al 尿 准确 测定 200 1000 必须 使 酰胺

平板 酰胺 灌注 干净 玻璃 1 2mm) 垂直 装置 进行 核酸 电泳 玻璃 冷却 通常 变形 造成 “微笑 ”。 回收 核酸 需要 接着 电泳 厚度 0. 5mm。 琼脂 丙烯 酰胺 普通 程序 电泳 使 样品 AA. PAK ARIE EL MERE RA SYBR 染料 染色 目测 电泳 核酸 状态 标记 核酸 电泳 方法 放射 显影 使 定位 标准 印迹 Northern 印迹 ) 放射 显影 需要 电泳 标记 /或 杂交 ,S1 核酸 保护 实验 RNase 丙烯 酰胺 丙烯 酰胺 电泳 详尽 讨论 参考 Berger Kimmel (1987), Sambrook Russell (2001)

14.2 参考 文献

Berger, S. L., and Kimmel, A. R. (1987). “Guide to Molecular Cloning Techniques.” Academic Press, San Diego, CA.

Sambrook, J., and Russell, D. W. (2001). “Molecular Cloning: A Laboratory Manual,” 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY.

附录 15 WAS. iAH FS By HE

Ambion, Inc. Applied Biosystems

2130 Woodward 850 Lincoln Centre Drive

Austin, TX 78744 :

800-888-8804 Foster City, CA 94404

www.ambion.com « 800-345-5224 www.appliedbiosystems.com

Amersham Biosciences

Corporation BD Biosciences 800 Centennial Avenue 2350 Qume Drive P.O. Box 1327 San Jose, CA 95131 Piscataway, NJ 08855 877-232-8995 800-526-3593 www. bdbiosciences.com

www.amershambiosciences.com - 389 -

RNA 鉴定 实验 指南

RNA 研究 方法

Beckman Coulter, Inc. 4300 N. Harbor Boulevard

Box 3100

Fullerton, CA 92834 800-742-2345 www.beckman.com

Bellco Glass, Inc. 340 Edrudo Road Vineland, NJ 08360 800-257-7043 www.belcoglass.com

Bio-Rad Laboratories 3300 Regatta Hercules, CA 94547 800-424-6723 www.bio-rad.com

Brinkmann Instruments, Inc.

One Cantiague Road P.O. Box 1019

~ Westbury, NY 11590-0207

800-645-3050 www.brinkmann.com

Calbiochem P.O. 12087

La Jolla, CA 92039-2087

800-854-3417

www.emdbiosciences.com

Cambrex Bio Science

191 Thomaston Street

Rockland, ME 04841 800-341-1574 www.cambrex.com

Clontech Laboratories BD Biosciences Clontech 1020 E. Meadow Circle Palo Alto, CA 94303-4230

800-662-2566 www.clontech.com

Cole-Parmer Instrument

Company 625 E. Bunker Court Vernon Hill, IL 60021 800-323-4340 www.coleparmer.com

* 390 -

Dharmacon

2650 Crescent Drive, #100 Lafayette, CO 80026 800-235-9880 www.dharmacon.com

Diversified Biotech, Inc. 1208 V.F.W. Parkway Boston, MA 02132 800-796-9199 www.divbio.com

DNA Diagnostics

P.O. Box 4544

Crofton, MD 21114-4544 703-495-9090 www.DNAdiagnosticsinc.com

Dynal Biotech, Inc.

9099 North Deerbrook Trail Brown Deer, WI 53223 800-558-4511 www.dynalbiotech.com

Eastman Kodak Co. 343 State Street Rochester, NY 14652 800-225-5352 www.kodak.com

Exon-Intron, Inc.

Specialists in Biotech Education P.O. Box 395

Loganville, PA 17342 800-407-6546 www.DNAtech.com

FOTODYNE, Inc.

950 Walnut Ridge Drive Hartland, WI 53029 800-362-3686 www.fotodyne.com

GenHunter

624 Grassmere Park Drive Suite 17

Nashville, TN 37211 800-311-8260 www.genhunter.com

Invitrogen Corporation 1600 Faraday Avenue Carlsbad, CA 92008 800-955-6288 www.invitrogen.com

ISCO, Inc.

P.O. Box 82531

Lincoln, NE 68505-0347 800-228-4250 http://ISCO.com

Kendro Laboratory Products 308 Ridgefield Court Asheville, NC 28806 800-522-7746 www.sorvall.com

Kimble-Kontes

1022 Spruce Street Vineland, NJ 08360 888-546-2531 www.kimble-kontes.com

Kirkegaard & Perry Laboratories, Inc.

2 Cessna Court

Gaithersburg, MD 20879

800-638-3167

www.kpl.com

Lofstrand Laboratories, Ltd. 7961 Cessna Avenue Gaithersburg, MD 20879 800-541-0362 www.lofstrand.com

Lumigen, Inc.

22900 W. Eight Mile Road Southfield, MI 48034 248-351-5600 www.lumigen.com

Matrix Technologies Corporation

22 Friars Drive

Hudson, NH 03051

800-345-0206

www.matrixtechcorp.com

Media Cybernetics, Inc. 8484 Georgia Avenue Suite 200

Silver Spring, MD 20910 800-992-4256 www.mediacy.com

Millipore Corporation 290 Concord Road Billerica, MA 01821 800-645-5476 www.millipore.com

Monomer Sciences, Inc. Nature’s Way

P.O. Box 520

New Market, AL 35761 www.monomer.com

Molecular Probes, Inc. P.O. Box 22010

Eugene, OR 97402-0414 800-438-2209 www.probes.com

Nalge Nunc International 75 Panorama Creek Drive Rochester, NY 14625 800-625-4327 www.nalgenunc.com

Perkin Elmer Life and Analytical Sciences, Inc.

549 Albany Street

Boston, MA 02118

800-762-4000

www.perkinelmer.com

New England Biolabs 32 Tozer Road Beverly, MA 01915 800-632-5227 www.neb.com

Nikon Instrument Group 1300 Walt Whitman Road Melville, NY 11747 800-526-4566 www.nikonusa.com

391 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

¢ 362 -

Omni International

4257 Aiken Drive, Suite D PO. Box 861455 Warrenton, VA 20187 800-776-4431 www.omni-inc.com

Owl Separation Systems 55 Heritage Avenue Portsmouth, NH 03801 800-242-5560 www.owlsci.com

Pierce Biotechnology, Inc. P.O. Box 117

Rockford, IL 61105 800-874-3723 www.piercenet.com

Polaroid Corporation 575 Technology Square Cambridge, MA 02139 800-225-1618 www.polaroid.com

Promega Corporation 2800 Woods Hollow Road Madison, WI 53711 800-356-9526 www.promega.com

Qbiogene

2251 Rutherford Road Carlsbad, CA 92008 800-697-1111 www.qbiogene.com

Roche Applied Science

9115 Hague Road

P.O. Box 50414

Indianapolis, IN 46250 800-262-1640 www.roche-applied-science.com

Rohm & Haas Co.

100 Independence Mall, West Philadelphia, PA 19106 800-221-8992

www.rohmhaas.com

Schleicher & Schuell Bioscience

10 Optical Avenue

Keene, NH 03431

800-245-4024

www.s-and-s.com

Sigma-Aldrich

3050 Spruce Street

St. Louis, MO 63160 800-521-8956 www.sigmaaldrich.com

Stratagene Cloning Systems 11011 North Torrey Pines Road La Jolla, CA 92037 800-424-5444 www.stratagene.com

Tri-Continent Scientific, Inc. 12555 Loma Rica Drive Grass Valley, CA 95945 800-937-4738 www.tricontinent.com

VWR Scientific

200 Center Square Road Bridgeport, NJ 08014 800-932-5000 WWW.Vvwrsp.com

Whatman, Inc.

9 Bridewell Place Clifton, NJ 07014 800-631-7290 www.whatman.com

Worthington Biochemical Corporation

730 Vassar Avenue

Lakewood, NJ 08701

800-445-9603

www.worthington-biochem.com

Zeiss, Inc.

One Zeiss Drive Thornwood, NY 10594 800-233-2343

Www.zeiss.com

附录 16 SI i

附录 17

A (adenine)

amol (Cattomole)

ARE (adenine/uracil-rich element)

BMP (bit map)

C (cytosine)

cRNA [complementary (antisense) RNA ]

cpRNA (chloroplast RNA)

ctRNA (countertranscript RNA)

DNA (deoxyribonucleic acid)

dNTP (a cocktail of nucleotides containing equimolar amounts of dATP, dCTP, dGTP, dTTP)

EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid)

fg (femtogram)

G (guanine)

GIF (graphics interchange format)

h (hour)

hnRNA (heterogeneous nuclear RNA)

JPEG (joint photographic experts group)

¥

w

E

|B

TT

G

Ik M

=e k

a h

ae da

d

C

= m

[ ] n

RLF J P

KLEE J f

by FE a

KLE z [ ]

wi Fl 4a 5

Fig OE

JR RETR, 10-18 mol

aE Fm ERPS / Be MB ME TO

Ath (RX) RNA

叶绿体 RNA

RNA

脱氧 核糖 核酸

含有 摩尔 dATP、dCTP、 dGTP, dTTP HRA

乙酸

OPeD

交换 文件 格式

均一 RNA

(“ 专家 ”创建 ) 文本 格式 . 393 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

pg (microgram) 微克 (10-°g)

pl (microliter) Ft (10° L)

min (minutes) at

mol (mole) 摩尔

mRNA (messenger RNA) 信使 RNA

MSDS (material safety data sheet) 材料 安全 数据

NaAc (sodium acetate) 乙酸

NTP (a cocktail of nucleotides containing 含有 摩尔 ATP. CTP, equimolar amounts of ATP, CTP, GTP, UTP) GTP, UTPHKHEAD

nt (nucleotide) KH

OD (optical density)

PCI [phenol : chloroform : isoamylalcohol 苯酚 : A: -(25 24: 1)

(25? 24: 1)]

PCR (polymerase chain reaction) Ey a EZ

pg (picogram) ar

Pu [purine (adenine, guanine) | mm (Ree, Sew)

Py [pyrimidine (cytosine, thymine, uracil) ] WME CARL PAE OE, FA) AR SE, SR TE REE )

q. s. (quantum sufficiat, quantum sufficit, quantum satis)

rDNA (recombinant DNA) 重组 DNA

RNA (ribonucleic acid) 核糖 核酸

RNase (ribonuclease) 核糖 核酸

RPA (ribonuclease protection assay) 核糖 核酸 保护 试验

rRNA (ribosomal RNA) 核糖 核酸

s, sec (second) Re

SAM (S-adenosyl-methionine) S-

T (thymine) Fa) FR Pa BE

TMB (3,3',5,5'-tetramethylbenzidine) 3,3',5,5'-PU PSX SRK

tRNA (transfer RNA) 转移 核糖 核酸

U (uracil) BR Oe We

(primary)

(secondary) =

(tertiary)

附录 18 商标 引用

AccuTaq LAIM Sigma-Aldrich 公司 注册 商标 Amerlite@ Rohm Hass 公司 注册 商标 Amplifluor@ Intergen 公司 注册 商标 Ampligen@ Hemispherx Biopharma 公司 注册 商标 AmpliTaq@ Roche Molecular Biosystems, Inc. 公司 注册 商标 AmpliWax@ Roche Molecular Biosystems, Inc. 公司 注册 商标 Blast@ National Library of Medicine 公司 注册 商标 Centricon Millipore 公司 注册 商标 CDP Star@ Appllied Biosystems 公司 注册

。394 -

Corex® # Corning, Inc 公司 注册 商标 Coomassie Imperial Chemical Industries, Inc. CSPD® # Appllied Biosystems 公司 注册 商标 Cy3® # Amersham Biosciences 公司 注册 商标 Cy5® & Amersham Biosciences 公司 注册 商标 Deep Vent® # New England BioLabs 公司 注册 商标

DNA Distick™ Invitrogen Corporation 公司 注册 商标

Dynabeads® { Dynal Biotech, ASA 公司 注册 商标

ECL™ # Amersham Biosciences 公司 注册 商标

E-Gel® © Invitrogen Corporation 公司 注册 商标

Elutip-d® # Schleicher & Schuell Bioscience 公司 注册 商标

Eppendorf® £ Eppendorf-NetherHinz GmbH 公司 注册 商标

ExpandIM Roche Applied Science 公司 注册 商标

Extractor@ Schleicher & Schuell Bioscience 公司 注册 商标

Ficoll® 4 Amersham Biosciences 公司 注册 商标

FORMAzol® Molecular Research Center, Inc. 公司 注册 商标

Gel-Pro@ Media Cybernetics,Inc. 公司 注册 商标

Gelstar® # FMC Corporation 公司 注册 商标

GenBank® # United States Department of Health and Human Services 公司 注册 商标 GeneAmp® # Roche Molecular Systems 公司 注册 商标

Hybond® & Amersham Biosciences 公司 注册 商标

Hyperfilm™ 4 Amersham Biosciences 公司 注册 商标

Igepal® # ISP technologies, Inc. 公司 注册 商标

JumpStar™ Sigma Aldrich Corporation 公司 注册 商标

Kimwipes® # Kimberly-Clark Corporation 公司 注册 商标

Lab-Line™ Lab-Line Instruments, Inc. 公司 注册 商标

Lumiphos® # Lumigen, Inc 公司 注册 商标

Minifold® # Schleicher & Schuell Bioscience 公司 注册 商标

Nalgene® { Nalge Nunc International Corporation 公司 注册 商标

Nonidet P-40® Shell International Petroleum Company Ltd. 公司 注册 商标 Nytran® 2 Schleicher & Schuell Bioscience 公司 注册 商标

Optitran® & Schleicher & Schuell Bioscience 公司 注册 商标

Parafilm® American Can Company 公司 注册 商标

pBluescript® Stratagene 公司 注册 商标

pGEM® the Promega Corporation 公司 注册 商标

PlexiglassIM Rohm and Haas Co. 公司 注册 商标

Polaroid@ Polaroid Corporation 公司 注册 商标

Polytron® Kinematica AG Company 公司 注册 商标

Posiblot® Stratagene 公司 注册 商标

Pronase® Calbiochem-Novabiochem Corp. 公司 注册 商标

PYREX® Corning,Inc 公司 注册 商标

RedTaqIY Sigma-Aldrich Corporation 公司 注册 商标

Riboprobe@ Promega Corporation 公司 注册 商标

RNAquard® Amersham Biosciences 公司 注册 商标

Y 注册 商标

&

° 395 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

FE ee a.

RNA/azer® § Ambion, Inc. 公司 注册 商标 RNasin® Promega Corporation 公司 注册 商标 Rubbermaid Newell Rubberr Corporation 公司 注册 商标

SaranWrapIM S. C. Johnson 公司 注册 商标

SeaKem GTG@ Cambrex Bio Science 公司 注册 商标

SephadexTM Amersham Biosciences 公司 注册 商标

Sepharose™ 42 Amersham Biosciences 公司 注册 商标

Speed Vac® Savant Instruments, Inc. 公司 注册 商标

Sigmacote® # Sigma-Aldrich Company 公司 注册 商标

Stratalinker® # Stratagene 公司 注册 商标

Subtractor® Invitrogen Corporation 公司 注册 商标

SUPERase。InIM Ambion,Inc. 公司 注册 商标

Super Scripf™ Invitrogen Corporation 公司 注册 商标

SYBR@ Molecular Probes,Inc. 公司 注册 商标

SYPRO® Molecular Probes, Inc. 公司 注册 商标

TAMRA™ £ Perkin Elmer 公司 注册 商标

Triton® # Union Carbide Chemical Plastics Co. , Inc. 公司 注册 商标

TaqMan® # Applied Biosystems 公司 注册 商标

TaqStarf!™ 4 Clontech Laboratories, Inc. 公司 注册 商标

Teflon® # E. I. DuPont de Nemours & Co. , Inc. 公司 注册 商标

Tissue-Tek® Sakura-Finetek 公司 注册 商标

TRI Reagent@ Molecular Research Center, Inc. 公司 注册 商标 TRIzol® Molecular Research Center, Inc. 公司 注册 商标 real TurbBlotter™ Schleicher & Schuell Bioscience 公司 注册 商标

Tween® # ICI Americas, Inc. 公司 注册 商标 Ultrafree® {2 Millipore Vorporation 公司 注册 商标 Vent® f2 New England BioLabs 公司 注册 商标 Whatman® f Whatman, Ltd. 公司 注册 商标 Ziplot® S.C. Johnson Son, Inc. 公司 注册 商标

《附录 ; )

jest)

- 396 -

&

abundance ”细胞 RNA RNA 比例 表述 特殊 mRNA 同样 相对 数量 常用 相对 表述

accession number 收录 ”GenBank 核酸 序列 (基因组 DNA BK cDNA) 氨基 序列 CRAM) 数字 标识 收录 相当 检索 数据 使 电子 卡片 目录

acetylation 乙酰 ”在 导入 乙酰 COCHs )。

adduct “一 反应 产物

adenine ”一 通常 DNA 胸腺 配对, RNA 尿 配对

adenosine REBBH, RE —MAARERHEE.

affinity chromatography #MER 根据 生物 活性 生物 结构 进行 物质 方法 利用 oligo (dT) RNA poly (A) 尾部 配对 蛋白 融合

alkylation ”对 修饰 修饰 基因 突变

allele 基因 ”一 基因 具有 替代 形式 形式

Alu repeat sequence 4I 重复 序列 序列 300bp, 广 整个 基因 重复 序列 限制 核酸 Ale 〈AGCT)

a-amanitin o- BBR, BBA ”一 毒素 ,来源 Amanita phalloides, 真菌 产物 RNA 聚合 抑制 效率 RNA 聚合 抑制

amber codon 琥珀 密码 翻译 终止 密码 UAG。

amino acids MBM 蛋白质 单位

ampliTaq 微生物 Thermus aquaticus 稳定 DNA 聚合 重组 表达 产物

anneal 退火 配对 形成

antigen 抗原 引起 抗体 合成 引起 免疫 反应 任何

antiparallel ”两 互补 方式 ; 相关 5 3 ' 相反 5 3 配对 DNA (DNA: DNA)、 RNA (RNA: RNA) DNA- RNA CDNA : RNA) 方式 进行

antisense RNA [也 写作 (一 )RNAj] RMX RNA 任何 mRNA 序列 互补 RNA RNA mRNA 极为 稳定 RNA。

AOI (area of interest) ”关切 定义 毗连 像素 排列 任意

argonaute ”一 蛋白 RNA 诱导 沉默 复合 (RNA-induced silencing complex, RISC) 通过 RNA 干扰 CRNAi) mRNA 降解

array PEF (microarray)

attenuation ”衰减 原核 操纵 方法

397

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

autoradiograph (也 autoradiogram) 放射 显影 目标 照相 软片 感光 乳剂 记录 目标 GRA) 放射 空间 的, 放射 显影 相片

autoradiography 放射 显影 X 线 照相 感光 乳剂 记录 标记 放射 衰变 信和

autosomes “除去 染色 染色 1 22 染色 染色

bacteriophage “噬菌体 ”一 感染 细菌 宿主 进行 繁殖 病毒 常用 克隆 衍生 病毒 研究 广泛 具体

base pairing “” 核酸 形成

B particle 8 粒子 ”放射 衰变 原子 放出 单个 电荷 基本 粒子 负电 B 电子 电荷 B

betaine HHH ”PCR 添加 减少 GC 结构 形成 DNA 标准 储备 浓度 5mol/L。

bioinformatics ”生物 信息 ”综合 计算 生物 工程 手段 使 庞大 核酸 蛋白 序列 信息 进行 归档

biotechnology 生物 工程 (人 参见 遗传 工程 ) 利用 微生物 动物 细胞 价值 产品 食物

biotin FMR 维生素 标记 核酸 目标

bit 比特 ”计算 识别 信息 单位 像素 计算 表述 决定 显示 彩色 度数

bit depth 比特 描述 像素 使 , 像素 深度 (pixel depth (bits per pixel, BPP).

bitmap 表示 阵列 阵列 单元 包含 描述 颜色 样本 数值

BLAST (basic local alignment search tool) ”常用 著名 生物 信息 资源 互联 使 BLAST GenBank 核酸 /蛋白 序列 进行 搜索 查询

BMP (bit map) 数字 文件 格式

BPP (bits per pixel) 描述 1BPP, 彩色 24BPP。

brightness 亮度 白色 包含 亮度 增加 颜色 白色 转变

buoyant density 浮力 密度 ”在 标准 溶液 漂浮 RNA DNA 浮力 密度 它们

CAAT box 75bp 保守 序列 启动

cap 帽子 mRNA 5 末端 结构 (5'-5') mRNA 转录 完毕 均一 RNA (hnRNA) 5" 进行 修饰 5 帽子 结构 ;帽子 结构 帽子 0 结构 限于 病毒 mRNA) 1 ( 1 常见 形式 ) 帽子 2 ( 2 普遍 帽子 1)

cDNA 互补 DNA (complementary DNA),

cesium chloride (CsCl) $40 $8 FA FF EBB AE 4) KAO EE. CoCl 常用 沉淀 RNA, CH 质粒 DNA 纯化

cesium trifluoroacetate (CsTFA) ”用 密度 梯度 密度 。CsTEFA 形成 CsCl 密度 梯度 RNA CsTFA 形成 沉降

chaotropic 生物 裂解 缓冲 破坏 细胞 接触 破坏 活性

- 398 -

chemiluminiscence 光一 杂交 检测 技术 反应 造成

chromatid 染色 染色 清晰 独立 单位 通常

chromatin 染色 “细胞 基因 DNA 复合 Ue (6 Jaa Tl 4 A AY BET ae A

chromosome jumping 染色 PPAR WF AKA (chromosome walking) 技术 脉冲 DNA 片段 非常 (KF 100kb) 目的 DNA 开始 移动 “步行 ”不 “跳跃 ”来 恰当 步行

chromosome walking 染色 ”系统 系列 包含 DNA 片段 克隆 DNA 片段 综合 特异 基因 序列 特异 确认 特殊 文库 回收 克隆 步行 重复 文库 杂交 使 文库 回收 3 末端 5 末端 作为 杂交 系列 克隆 特定 基因 进行 基因 手段 朝向 背离 目标 基因 ”扫描

cistron MRF BAA DNA 特异 序列 专用 定义 基因

clone (名 ) 克隆 遗传 细胞

clone (动词 ) 克隆 特性 进一步 特定 核酸 序列 细胞 进行 操作

clone Bank 克隆 银行 ”一 名词, 现在 cDNA 文库 基因 文库

coding strand 编码 DNA 产物 RNA 序列 胸腺 代替 尿 )

codon 密码 mRNA 编码 确切 顺序 决定 氨基 符号 终止 ) 密码 特异

competitive PCR 3% PCR 非常 灵敏 定量 转录 方法 同一 反应 竞争 引物 dNTP DNA 改变 DNA 竞争 (LH DNA ) 找到 目标 DNA 稀释 浓度 极为 精确 定量

complementary DNA (cDNA) 互补 DNA (cDNA) 体外 RNA 模板 合成 DNA。 实验 形式 细胞 生物 EDNA 既是 永久 生化 记录 记录 提供

compression 压缩 ”一 数学 技术 存在 记忆 (memory) 表述 确认 编码 数据 编码 代替

consensus sequence 共有 序列 ”在 进行 检查 序列 氨基 ; 共性 序列 单个 氨基 序列 模糊 百分比 特别 指出 〈Aso A 比例 90%), 直接 序列 置换 (ATCG C/A TGTAT)

conserved sequence ”保守 序列 ”在 物种 差别 微小 差别 DNA 序列

constitutive gene expression 基因 表达 RNA 聚合 基因 启动 序列 结合 调控 表达 基因 通常 维持 基线 表达 基因

contrast ”对比度 锐利 程度 / 差别 彩色 跨度 颜色 差别 明显

countertranscript RNA (ctRNA) 转录 RNA RNA 称呼 原核 基因 表达 讨论 ctRNA。

Curie (Ci) AB 放射 基本 度量 单位 。1Ci 3.7 10!Bq〈 衰变 )

cycloheximide 线 “一 抑制 细胞 蛋白 药物 原核 细胞 蛋白 没有 影响

cytidine JOMRKE. HH SAM MME MAMA.

cytogenetics ”细胞 遗传 ”这 遗传 主要 研究 染色 结构 行为

。399

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

cytoplasm “细胞质 ”细胞 细胞

cytosine ”一 通常 DNA 配对

degenerate codon 密码 ”编码 氨基 密码

denaturation (of nucleic acids) (MR) 变性 DNA RNA 转变 意味 消失

deoxyribonucleic acid (DNA) “脱氧 核酸 DNA 聚合 催化 形成 脱氧 核糖 磷酸 体内 复制 体外 PCR 方法 合成

diethyl pyrocarbonate (DEPC) 碳酸 ”用 清除 核酸 活性 试剂 。DEPC ARM 操作 供应 商都 提供 核酸 试剂 避免 DEPC 使

differential display PCR (DDPCR) 差异 显示 PCR 鉴定 RNA 族群 特异 转录 表达 序列 方法 。DDPCR 建立 PCR 技术 基础 PCR 系统 引物 保证 RNA cDNA 形式 ;再 通过 电泳 比较 样本 产物 生物 样本 同一 产物 表达 转录 ; MREAHAKERASRAE, BARRA

differentiation 分化” 细胞 生生 结构 变化 ,由 产生 结构 功能 细胞

dimethyl sulfoxide (DMSO) ”在 电泳 导致 RNA 变性 试剂 。DMSO 降低 DNA Ta。。(melting temperature, ) 距离 PCR

diploid “与 染色 1 ) 染色 3 ) 细胞 染色 2 )。

directional cloning 定向 克隆 通过 限制 cDNA 基因 DNA 末端 DNA 载体 技术

DNA polymerase [| DNARGAI 原核 DNA 模板 合成 DNA。 DNA RFS Kornberg 3 截然 活性 : 5'->3' 活性 ;5'->3' 活性 3 5 核酸 活性 Klenow 片段

dot blot 斑点 印迹 ”对 样品 特定 RNA DNA 序列 定量 印迹 技术 真空 样品 斑点 [ 印迹 (slot blot)] 印迹 没有 电泳 相关 定性

downstream 参考 3 方向 序列 表达 方向 延伸 )。 密码 mR- NA 5 帽子 结构

duplex ”通过 互补 配对 形成

electropherogram “电泳 ~ ”显示 DNA 测序 反应 结果

electrophoresis, ”电泳 ”一 色谱 技术 蛋白 核酸 ) 通过 介质 带电

electrophoretogram 电泳 电泳 照片 电泳 空间

ELISA 免疫 吸附 测定 enzyme-linked immunosorbent assay。

enhancer element 增强 DNA 调控 序列 增强 启动 效率 转录 增强 作用 目标 启动 方向

enrichment BS 任何 提高 若干 RNA 细胞 合成 RNA 比例 方法 MEAG poly(A)” RNA mRNA。 方法 细胞 裂解 诱导 RNA。 休眠 细胞 血清 刺激 诱导 ) 细胞 重新 进入 细胞 周期 表达 增殖 特异 RNA,

enzyme-linked immunosorbent assay 免疫 吸附 测定 通过 ,测定 - 复合 方法

ethidium bromide (EtBr) -种 平面 插入 核酸 DNA RNA) 染料 紫外 线 照射 橘红 荧光 ,EtBr 染色 拍照 留待 查询 。EtBr 标准 储备 浓度 10mg/ ml, 0.5 1pg/ml。

。400 -

exon mRNA 翻译 翻译

expressed sequence tag (EST) ”表达 序列 标签 cDNA 克隆 序列 数据 收藏 基因 鉴定 序列 数据

file format 文件 格式 ”根据 模式 存在 方法 TIFF, BMP, JPEG #1 GIF.

formaldehyde FARE ”常用 RNA SHEA. Ai CE RP) DRE. RE BP BAT HA A HA 怀孕 女性 避免 使

formamide FARRER ”常用 溶剂 降低 (Tm) 变性 添加 杂交 反应 保持 严谨 电泳 甲醛 使 使 RNA 变性 酰胺 致癌 怀 避免 使

fosmid 《因子 装配 质粒 〈cosmid) 携带 DNA 插入 片段 10kb DNA, MA 质粒 cosmid fosmid 携带 45 50kb DNA。 体积 庞大 细菌 获得 1 fosmid 进行 复制 克隆 载体 质粒

frame grabber , 捕获 ”一 计算 硬件 计算 直接 摄像

functional genomics 功能 基因 ”研究 细胞 RNA 细胞 调控 RNA 研究 基因 表达 )

gamma (y) 线性 因子

gene BA 遗传 单位 基因 指导 合成 染色 DNA 序列

genetic engineering (recombinant technology, rDNA. gene cloning, gene splicing) 遗传 工程 A, BA DNA, ARE. SAH) 物种 基因 基因 片段 物种 技术 完整 具有 深远 潜力 产业 biotechnology,

genome BAA ”细胞 染色 DNA 整体 操作 需要 细胞 基因 DNA 线粒体 基因 DNA。

genomic DNA 基因 DNA 染色 DNA。 线 表示 mtDNA, 绿 基因 表示 cp- DNA,

genomics 基因 ”研究 基因 结构 DNA 测序 数据 密切 相关

genotype BAD 存在 细胞 生物 基因 基因

GIF (graphics interchange format) 交换 文件 格式 ”一 基于 256 格式 线 相关 数字 通常 GIF 格式 储存

glyoxal 试剂, 电泳 常用 使 RNA 变性 DMSO

gray level 黑白 赋予 单个 像素 表示 亮度 数值 8 数值 范围 0 255, 相应 表示 渐变

guanine SEM FLUE AC AY mE.

guanosine SERRE. SH SASEAMENERE.

haploid SR 具有 完整 染色 配子 ,每 染色 1 ) 细胞 (diploid) 〈triploid)

hapten ”本身 抗原 抗原 蛋白 ) 具有 抗原

heterogeneous nuclear RNA (hnRNA) 均一 RNA mRNA ; RNA BABS I HRN 初始 产物

histones 蛋白 辅助 染色 建成 识别 染色 DNA 结合 蛋白 蛋白 蛋白质

Hogness box (TATA box) Hogness (TATA ) 保守 AT 基因 转录

。401 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

25bp 处, RNA 聚合 识别

holoenzyme ”完整 切割 产物 )

housekeeping gene “看 基因 “在 细胞 持续 表达 理论 始终 持续 表达 ) 基因 ”其 产物 维持 细胞 生存 必需 它们 表达 恒定 常用 测定 基因 转录 表达 基因 表达 没有 变化

hybridization 杂交 核酸 形成 显示 互补 程度 直接 杂交 系统 严谨 相关

hydrogen bonding 结合 电荷 负电 原子 (如 ) 定向 吸引 作用 核酸 杂交 形式 结合 Chase pairing)

hyperpolymer ”标记 相互 杂交 标记 现象 标记 切口 ) 引物 合成 骨架 末端 封闭 失败 ) 情况 造成 信号 放射 显影 缩短 曝光 损失

image 图像 扫描 输入 艺术 照片 原件

image analysis 目标 数字 自动 目标 电泳 ) 进行 参数 密度 ) 测定 电子 手段

image class

inosine (1) KR ORK) ”含有 合成 ”或 “猜测 ”(guess-mer) HYAMS.

in silico 计算 通过 计算 生物 信息 软件 预测 转录

intron ASF ”一 基因 编码 序列 Chat) HRA DNA 序列 转录 现在 均一 RNA (hnRNA) 随后 RNA 系统 切除

ionizing radiation 电离 辐射 ”从 原子 释放 电子 导致 离子 生成 任何 辐射 ac、B 7 辐射

isoprenylation 连接 蛋白 修饰

isotope 同位素, 相同 原子 序数 原子 原子 9

JPEG (joint photographic experts group) 专家 ”一 广 彩色 照片 数字 电子 压缩 方法 :

Klenow fragment (Klenow enzyme) Klenow 片段 〈Klenow ) 杆菌 DNA 聚合 片段 枯草 杆菌 蛋白 消化 DNA 聚合 克隆 方法 制备 。Klenow 片段 具有 5 3 聚合 活性 3 5 核酸 活性 没有 具有 5 3 核酸 活性 DNA 聚合

leader sequence 前导 序列 ”成熟 mRNA 密码 5" 翻译

library 文库 包含 研究 目标 序列 代表 特定 生物 材料 基因 DNA cD- NA 复杂 克隆 集合 构建 方式 恰当 载体 cDNA 基因 DNA 序列 核酸 杂交 筛选 回收 目的 克隆 建文 使 表达 载体 抗体 识别 进行

ligase ERM 核酸 连接 连接 ”( DNA 连接 功能 相反 限制 核酸 ”。

ligase chain reaction (LCR) 连接 反应 DNA 技术 鉴定 突变 PCR 效率 ,LCR 鉴别 LCR 产物 兼顾 效率 识别 改变 需求

locus (复数 loci) 基因 基因 基因 染色 确切 定位

marker 标记 实验 任何 目标 基因 泛称 marker 表示 标准

meiosis MEXR ”产生 配子 细胞 ) AAR}

。402 -

7 ii at

melting temperature 温度 Jl Tn.

Mendel (Father Gregor Mendel) 德尔 (HBB + 德尔 神父 ) F 1865 首次 提出 基因 概念 牧师 闻名

messenger RNA (mRNA) 信使 RNA RNA 转录 合成 产物 ,mRNA hnRNA 蛋白质 翻译 结合 指导 合成 编码

metabolomics 代谢 ”鉴定 样品 动物 微生物 单个 细胞 量化 数量 科学 (和 代谢 ) 研究 使 方法 包括 核磁 共振 CNMR)、 色谱 酰胺 (2D-PAGE) 质谱

metabonomics 代谢 动物 代谢

methylmercuric hydroxide (methyl mercury) FPRPRAAUH (HSER) 电泳 使 RNA 变性 选择 情况 尽量 避免 使

microarray 阵列 DNA 片段 印迹 玻璃 尼龙 基因 表达 进行

mismatch 容忍 退 (CT): 完全 匹配 稳定 周边 序列 PCR 引物 退火 步骤 变数

mitosis AAR 细胞 细胞 产生 遗传 )

monocistronic #IRRFR 编码 mRNA 分子

MOPS 3-(N- )- RNA 缓冲 系统 关键 甲醛 。10 X MOPS= 200mmol/L MOPS, pH 7.0; 50mmol/L NaAc,10mmol/L Naz-EDTA, pH 8. 0。

MSDS (material safety data sheet) 材料 安全 数据 描述 理性 文件 包括 物质 正确 操作 泄漏 销毁 方法 摄取 毒性 数据 急救 。MSDS 妥善 收藏 实验

multiplex PCR PCR PCR 反应 ) RPI ERE.

normalization 标准 ”为 使 系列 样本 进行 操作

Northern analysis (Northern blotting) Northern (Northern 印迹 ) ”把 琼脂 RNA 转移 滤纸 固定 杂交 技术 。Northern 印迹 目的 基因 表达 进行 定性 定量

nuclear runoff assay 逃逸 实验 ”一 细胞 转录 进程 产生 RNA 进行 标记 方法 RNA 转录 速率 通过 检测 标记 程度 测定 RNA (steady-state RNA) 比较

nuclease protection assay ”核酸 保护 实验 ”对 转录 进行 定位 定量 方法 : 目的 RNA 溶液 杂交 ;, 随后 核酸 完全 消化 参与 形成 锁定 核酸 较为 安全 ;最 通过 电泳 沉淀 降解 RNA : RNA 5K RNA: DNA 进行 定量

nucleoside ”一 《〈 尿 ) 脱氧 核糖 )

nucleotide KERB 含有 脱氧 核糖 ) 胸腺 尿 ) 磷酸 DNA RNA 构件

nuclide HR 相同 原子 序数 原子

ochre codon 赭石 密码 UAA 密码

oligonucleotide ”人工 合成 短片 DNA OH. AWA RKRRET RSID. BAH RNA 短片

opal codon 乳白 密码 UGA 密码

ortholog 基因 物种 物种 功能 基因 鉴定

> 403 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

程度 揭示 物种 进化 亲缘 关系

palindromic sequence 序列 “一 DNA 序列 5 -~3 序列 相同

PC] 实验 标准 符号 : 氯仿 : HRM (25 : 24 : 1) 混合

PCR 反应

pentose KH, HRB ”核糖 脱氧 核糖 ,

pharmacogenomics ”药物 遗传 研究 基因 相互 作用 病人 药物 反应 药物 基因 术语 药物 遗传 使 广泛 侧重 研究 药物 反应 药物 基因 关注 别人 创立 药物 细胞 途径 相互 作用

parmacokinitics “药物 动力 ”研究 体内 特定 药物 吸收 清除

phosphate-buffered saline (PBS) “磷酸 缓冲 生理 盐水 ”一 常用 洗涤 残留 培养 溶液 。5XPBS( )=40g NaCl, 1.0g KCI,5.75g Naz HPO4,1g KHzPO4; 5 使 稀释 1X

phosphorimaging ”磷酸 ”用 测定 放射 衰减 电子 X 线 酸化 提供 线性 酸化 测定

photodocumentation ) 电泳 标记 杂交 立即 保存 方法 支持 ) 媒体 包括 照片 、X 射线 (thermal paper) 数字 储存 〈image analysis)

photon 光子 没有 质量 转移 电磁 粒子

pixel RH 照片 ; 数字 合成 单元 像素 yy 坐标 整个 贡献

plasmid 质粒 封闭 DNA 原核 细胞 自动 复制 质粒 ) 接受 通常 10kb DNA 选择 标记 辅助 序列 鉴定 嵌入 DNA.

poly(A)* tail poly(A)” B 催化 ,在 mRNA3 ' 寿 poly(A) 添加 包括 初始 转录 3 端的 随后 酸化

polyadenylation signal 酸化 信号 ”一 6 (AAUAAA), He ML ne 效率 mRNA 3 剪接 受到 “〈 受到 ) 酸化 信和 转录 ,AAUAAA 功能 GU U 连接

polycistronic ”多 ”该 术语 编码 mRNA,

polymerase chain reaction (PCR) 聚合 ”这 引物 特异 基因 ecD:- NA 序列 系统 反应 10 技术 使 革命 变化 : 技术 具有 非常 灵敏 优点 ,并且 迅速 完成 使 技术 研究 均一 样品 目标 序列

polymorphism 属于 变化 遗传 特征

polysome 核糖 ”一 同时 核糖 翻译 mRNA,

post-transcriptional regulation ”转录 调控 ”所 转录 事件 影响 任何 基因 表达 步骤 翻译 装配 事件 :

post-translational regulation ”翻译 调控 ”发 初始 合成 任何 事件 影响 任何 基因 步骤 修饰 效率 限于 羟基

precursor RNA RNA 参见 均一 RNA (hnRNA) mRNA 〈prermRNA) WN RNA 初始 产物

pribnow box 共有 序列 TATAATG, 基因 转录 启动 细菌 10bp

primer 引物 核酸 互补 序列 原理 设计 自由 3-OH,

« 45 -

* ii vat

进行 依赖 引物 扩展 反应

probe #it 通常 标记 核酸 (DNA RNA) 常用 文库 互补 序列 核酸 存在 复杂 目标 序列 进行 杂交 , Northern 、Southern 核酸 保护 实验

processivity 延伸 (如 DNA 聚合 ) DNA 模板 生长 产物 )

promoter 启动 ”在 转录 开始 ,RNA 聚合 蛋白 结合 特殊 DNA 序列

proteome 蛋白质 ”细胞 特定 蛋白质 集合 蛋白 通过 双向 (2D) 电泳 识别 鉴定 翻译 产物 技术 制作 评估

proteomics ”研究 蛋白 表达 ; 特别 研究 特定 生化 细胞 蛋白 同类 白质 刺激 变化 方法 方便 同时 蛋白 功能 特征 进行 研究 白质 构建 研究 方法 研究 正常 病态 细胞 蛋白质 功能 功能 相关

purine RM REKRASRBR NSA LAD ARE.

pyrimidine MERE ff ME AREY oO EY EE

quinone 42M. 苯酚 氧化 产物 核酸 断裂 磷酸 RNA 制备 影响 RNA 质量 RNA 使 避免 影响

q-s. #27 (quantum satis) 缩写 含意 ”。 实验 方案 程序 含意 研究 足够 反应 达到 特定

RACE (rapid amplification of CDNA ends) cDNA 末端 快速 ”这 极其 技术 主要 : 5RACE 3RACE。 别克 5 末端 3 末端

radiochemical 放射 试剂 ”一 含有 放射 原子 试剂

radiolysis ”辐射 裂解 非常 放射 同位 标记 ,DNA RNA 物理 裂解 程度 标记 函数 关系

radionuclide 放射 自动 产生 放射 稳定 同位

rea-time PCR 实时 PCR 实时 测量 PCR 累积 产物 测量 反应 结束 产物 方法 重要 定量 PCR 实验

renaturaton (also reannealing) SM 退火 ) 变性 互补 DNA RNA 重新 结合

restriction endonuclease 限制 ”一 DNA 修饰 预期 切断 DNA 认为 “分 ”。 DNA 4 、6 8 切断 磷酸

retrovirus RRBs ”一 RNA 基因 病毒 通过 遗传 物质 DNA 进行 繁殖

reverse transcriptase (RT) RRB IDK RNA DNA 聚合 RNA 模板 合成 互补 DNA (cDNA) 许多 使 包括 常用 AMV (来 : SRRMAW RE) MMLYV (来 : 白血病 病毒 ) 没有 RNase H 活性 合成 特定 cDNA。 稳定 PCR 实验 细菌 (Thermus thermophilus) 含有 依赖 Mn2* SPAT RRR A ABER CRT-PCR),

ribonuclease (RNase) 核糖 核酸 ”一 迅速 降解 RNA DF. Alt. RNA 操作 必须 注意 控制 活性

ribonuclease A (RNase A) 核糖 核酸 A 核糖 核酸 RNA RHR (Py/pN) 3 端的 磷酸 3 -磷酸

ribonuclease H (RNase H) 核糖 核酸 直接 RNA : DNA RNA HAA.

ribonuclease T; (RNase Ti) 核糖 核酸 Ti 核糖 核酸 RNA

“和

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

4) Fh HM (GpN) 3 端的 磷酸 核糖 核酸 A 生成 3 -磷酸 ribonucleic acid (RNA) 核糖 核酸 ”由 RNA 聚合 合成 核糖 。RNA 转录 产物 ribosomal RNA (rRNA) 核糖 RNA 细胞 RNA 主要 。rRNA 含量 丰富

样品 完整 功用 比较 简单 RNA 电泳 作为

参照 ribotyping ”核糖 核酸 VW 限制 切片 (restriction fragment length polymorphism,

RFLP) 依据 技术 根据 rRNA 基因 结构 特异 差异 鉴定 细胞 微生物 ribozyme ”具有 催化 活性 RNA

RISC (RNA-induced silencing complex) RNA 诱导 沉默 复合 核糖 核酸 复合 通过 裂解 信使 RNA (mRNA) RNA Fit. RLM-RACE (RNA ligase-mediated RACE) RNA 连接 RACE 快速 cDNA 末端

形式 片段 连接 mRNA DNA. 方法 优点

精确 5 转录 克隆

RNAi RNA 干扰 ”转录 基因 沉默 ;降解 mRNA 抑制 蛋白 翻译 RNA polymerse RNA 聚合 ”以 DNA 模板 转录 合成 RNA SI nuclease SI 核酸 需要 离子 PH,,

选择

SAGE (serial analysis of gene expression) ”基因 表达 系列 通过 连接 cDNA 片段

测定 实验 基因 转录 活性 生物 信息 工具 saline sodium citrate (SSC) 柠檬 盐水 ”经 常用 核酸 杂交 实验 杂交

缓冲 杂交 洗涤 主要 。20 X SSC= 3mol/L NaCl, 0. 3mol/L 柠檬 pH

ET Ue saline sodium phosphate-EDTA (SSPE) 磷酸 -EDTA 生理 盐水 ”经 常用 核酸 杂交 实验 溶液

杂交 缓冲 杂交 洗涤 主要 缓冲 核酸 磷酸

Northern 杂交 Southern 杂交 增强 封闭 提供 。20

SSPE=3mol/L NaCl, 0. 2mol/L NaH2PQ, » H2O, 0.02mol/L Naz-EDTA, pH # 7.4, KR. sense RNA[(+)RNA] TEX RNA mRNA 完全 相同 RNA。 RNA

mRNA 进行 杂交 ,正义 RNA Southern 作为 ,正义 RNA

杂交 程度 实验

Sevag RB Mii HMM 〈24 : 1) 混合 旧名 Sevag MG, et al. J Biol Chem,

1938,124: 425-436 slot blot 印迹 样品 特定 RNA DNA 序列 定量 印迹 技术

通常 样品 斑点 印迹 (dot blot)]。 印迹 没有 电泳 相关 定性 sodium dodecyl sulfate (SDS) 硫酸 一般 破碎 生物 抑制 RNase 活性 离子

Southern analysis Southern Southern 印迹 ) 琼脂 DNA 转移

固定 杂交 技术 Southern 信息 定性 定量 评估 特殊 基因

Spatial resolution 空间 双向 (长 ) 像素 定义

specific activity 放射 单位 质量 放射 物质 放射 活性 常用 表示 方法 / 摩尔 (Ci/mmol)

SSC 参见 柠檬 盐水

SSPE 参见 磷酸 -EDTA 生理 盐水

steady-state RNA RNA 细胞 细胞 积累 RNA。 例如 特定 mRNA - 406 o

需要 转录 速率 联系 实验 (nuclear runoff assay) 比较

Stoffel fragment (AmpliTaq DNA polymerase) Stoffel 片段 ”一 重组 DNA 聚合 AmpliTaq 聚合 289 氨基 稳定 活性 离子 浓度 需要 范围 , FF AR 5 3' 活性 通常 PCR。

stringency 严谨 核酸 核酸 估量 评估 核酸 程度 程度 互补 利于 互补 核酸 稳定 杂交 利于 非特 异性 杂交 比例 增加

structural gene 结构 基因 核糖 RNA (rRNA) 转移 核糖 核酸 (RNA) 相反 使 RNA (mRNA) 基因 结构 基因 独特 适度 重复 基因 构成 Co 动力 展示 那样

SYBR Green, SYBR Gold SYBR 绿 ,SYBR 染色 核酸 染料 Wi (DMSO) 配制 10000 储备 Tris 缓冲 SYBR 染料 使 浓度 ,1X Tris- 乙酸 -EDTA (TAE), 使 SYBR 染料 优点 减少 背景 荧光 , 灵敏 降低 突变 。SYBR 绿 SYBR DNA, SYBR 绿 RNA.

systems biology ”系统 生物 ”整合 生物 信息 (DNA, RNA 蛋白质) 帮助 理解 生物 相互 关系 ,以 它们 影响 细胞 整个

TAE buffer TAE 缓冲 Tris- -EDTA 缓冲

TAP (tobacco acid pyrophosphatase) “烟草 酸性 ”这 除去 mRNA 5 结构 广泛 RNA 连接 CDNA 末端 快速 〈RLM-RACE)。

Taq DNA polymerase Tag DNA BAR —FH Mit (Thermus aquaticus) DNA ¥ 。Tad 聚合 进行 聚合 (PCR) 聚合

target ”与 核酸 序列 互补 DNA RNA 序列 固定 溶液 进行 杂交

TBE buffer TBE 缓冲 参见 Tris- -EDTA 缓冲

TEMED (N,N,N’,N'-tetramethylethylene diamine) N,N,N ,N -四 制备 丙烯 酰胺 酰胺 聚合 催化

template ”模板 合成 信息 蓝图 聚合 反应 (PCR) 聚合 反应 需要 模板 指导 精确 序列 模板 反应 进行

thermal cycler 聚合 (PCR) 仪器

thymidine 胸腺 ”含有 胸腺

thymine 胸腺 ”通常

TIFF (tagged image file format) 目标 格式 ”用 储存 软件 文本

Tn 温度 ”在 温度 ,50 促进 形成 Tu 进行 温度 , 当然

trailer sequence ”尾部 序列 ”位 mRNA3 端的 翻译 序列 poly(A)+ mRNA 序列 poly(A) 尾巴

transcription 转录 RNA RAMU DNA 模板 合成 RNA

transcription elongation ”转录 延伸 RNA 特征 3 形式 聚合 沿 模板 移动 合成 RNA DNA 置换 ,DNA 模板 退火 恢复

transcription initiation 转录 RNA 合成 步骤 RNA 聚合 DNA 结合 开始 模板 展开

transcription termination 转录 终止 RNA 合成 转录 识别 ,RNA 添加 。RNA ,RNA

。407

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

Al RNA 聚合 DNA 模板

transcriptome “转录 “特定 细胞 特定 环境 产生 整套 信使 RNA (mRNA)

transcriptomics ”转录 ”对 转录 mRNA 变化

transfection ”将 核酸 细胞 , 常用 方法 暂时 细胞 恢复 ; 稳定 , DNA 整合 寄主 细胞 染色 细胞 稳定 少见

transfer RNA (tRNA) 转移 核糖 核酸 ”细胞 含量 比较 丰富 RNA. 蛋白 合成 携带 氨基 核糖 tRNA ( A )。 tRNA 含量 偶尔 作为 细胞 转录 指标 进行 转录 指标 显示 特殊 实验 操作 细胞 转录 改变

translation MiZ ”以 RNA 模板 编码 信息 合成 mRNA 核糖 解读 eT.

translation elongation ”翻译 延伸 ”蛋白 包括 蛋白 合成 , 氨基 羧基

translation initiation ”翻译 ”蛋白 合成 涉及 mRNA a. x SE BT AY A AE A a, ER SS AER. KERN BE EY N

translation termination ”翻译 终止 ”蛋白 合成 完成 指导 合成 mRNA 核糖 释放

triploid 染色 染色 3 )。 〈diploid) (haploid)

Tris-acetat-EDTA buffer (TAE buffer) Tris- -EDTA 缓冲 ”常用 DNA 电泳 。50 TAE (每 ) 242g Tris ; 100ml 0. 5mol/L Naz-EDTA,pH8. 0; 57. lml KEM; KA. MFA RE 1X TAE。

Tris-borate-EDTA buffer (TBE buffer) Tris- -EDTA 缓冲 DNA 电泳 缓冲 DNA。20XTBE( ) 121g Tris ; 61.7g 硼酸 ; 7. 44g Naz-EDTA。 使 浓度 1X TBE.

tRNA 参见 转移 核糖 核酸 (transfer RNA),

Tth DNA polymerase Tth DNA RAB CAFR rTth) 重组 Thermus thermophilus DNA 聚合 表现 依赖 RNA DNA 聚合 活性 活性 ), 合成 DNA, 接着 进行 标准 依赖 离子 PCR 反应

upstream 上游 指定 5 方向 表达 方向 相反 ) 序列 细胞 mRNA5' 结构 密码

uracil FROME 通常 配对

uridine 尿 尿 ”一 含有 尿

vanadyl ribonucleoside complexes (VDR VRC) 核糖 复合 ”一 RNase 制剂 温和 RNA 裂解 缓冲 抑制 RNase 活性 复合 RNA 功能

vector 载体 核酸 , 质粒 体质 连接 核酸 “〈 序列 DNA) 含有 序列 载体 适当 寄主 细胞 携带 DNA 增殖

Western analysis (Western bloting) Western (Western 印迹 ) 丙烯 酰胺 白质 转移 进行 抗原 -抗体 识别 鉴定 技术 。Western 信息 定性 定量 评估 特定 状态

xenobiotic “一 细胞 体内 没有 制品

(CUBR SSF; ahPp )

- 408 -

斑点 印迹 Fil PH Pre

宝丽来 DS-34 手提 照相

曝光 背景 校正 苯酚 编号 编码 编码 丙烯 酰胺 IK FH te UL

RNA -校正 PCR

差异 显示 PCR

§ist PCR

引物 AK AA EA AER 初级

113,

33, 41, 42, 359,

298,

296, 307, 308,

123 BYAL|

=I

- 磷酸 核糖

代谢 代谢 RT-PCR

构象

蛋白 K

蛋白 阵列

蛋白

蛋白质

密度 离心

cDNA

饱和

电压

电泳

FB ok AS

电泳 缓冲

电泳

电源

印迹

短发 RNA

RNA

PCR

“4%” PCR

160,

124, 125,

190

386

- 409 -

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

均一 RNA 354 核酸 保护 实验 1 2,5- FE BE mE 186 | 核酸 av An ie 271 | Rew 2 = Bie Dh HE BE 28 | 核糖 核酸 26 1,2- 生物 191 | 核糖 核酸 保护 199,321 碳酸 30 | 核糖 70 核糖 RNA AY SLO 逃逸 实验 1, 37, 211, 2139 Geese 翻译 15 | .和 1 斑点 印迹 99 | 151 55 | 4bar AEH ee RNA 165,334 | 检测 191 IRE RAR BBE JZ NM 239 | 基因 346 KER 230 | 荧光 181 防护 96 | 138 放射 显影 182 | 校正 138 PCR 240 | 混合 154 5 18 标准 113 J 生物 9 | 蛋白 168,270 / 仿 302 | 基本 搜索 工具 ‘eee 276 | 基因 表达 系列 1 G 基因 346 基因 DNA 162 甘油 -3- 168, 271 | 基因 346 mRNA 76 | 基质 辅助 激光 解吸 电离 飞行 348 功能 基因 346 | 甲醛 91,109,373 共有 序列 10 甲醛 变性 , APO - - 46 | 甲醛 变性 琼脂 66 AV - POR - Poa th HE He AR 44 甲醛 变性 系统 150 FL ths eh PA 45 7, 91, 109, TOURES HRT 162 | 兼并 引物 248 PH IB a 125 | 印迹 147 生物 标记 302 | 降落 PCR 244 PCR 系统 290 胶片 130 硅胶 离心 73 | 胶片 186 硅胶 滤器 55 | WEA RNA ‘i BB 硅烷 71, 373 | 温度 6,1 ALA 31 | #4 PCR 273, 283 氧化 系统 192 | 丙烯 活塞 85 H 聚合 反应 163,239 144 RNA 38 | WARE 19

.410 -

FR Bis FEAR

PR A ty Be 冷冻 冷却 电离 耦合 离心 离子 强度 蛋白 亮度 Bi. FA A

氯仿

-尿素 At

脉冲 标记 转录 毛细

5 帽子

美国 国家 生物 技术 信息 密度

密度 梯度 离心

密码

模板 程度

模板

5 末端

3 "末端 标记

5 末端 标记 末端 脱氧 转移

标准

105,

143,

85

347 168 149 311 246

32 183 132

33

67

Ame

标准 尼龙

黏度

末端 Sm

尿

BR ME Bie - N-BE A 尿素

Bee ABC a UE BER

欧洲 生物 试验

平板 筛选 实验

启动 密码 8- 切口 平移 蛋白 AA 清洗 琼脂

变性

启动 PCR 循环

DNA 数据

离心 特异 核酸 缓冲

ea

168,

270 114 143

356

254 10 19 18

33, 42

169,

163 320 271

31 134 383

RNA 鉴定 实验 指南 RNA 研究 方法

生物 79, 159, 189 生物 信息 346 N- 32 硫酸 31,32 实时 PCR 275,289,290 聚合 231 手持 紫外 133 手套 29 驱动 64 数字 130 cDNA 162 RNA 334 We RNA 干扰 334 双氧水 31 186 随机 引物 163 6- 290 Ay 154 174 浓度 174 体外 翻译 1, 97 体外 转录 167 体外 转录 模板 275 同位 156 克隆 345 131,140 He Fe 65 脱氧 核糖 2 W 12 捕获 12 272 标准 113 RNA 334 微量 126 微型 斑点 印迹 装置 | 98 ht FY PK Se EY ak He I 98 326 327 尾部 序列 19 温度 173

。412 +

ais Hie a 涡轮 印迹 BR

细胞 培养

细胞 poly (A)* RNA 细胞 RNA

细胞 RNA KBE EN Ob ARS

pe He Eh BS 检测

显影

线粒体 16S rRNA

5“- 磷酸

Aig GR MS

相对

硝酸 纤维

差异 表达 校正 PCR

Fis) FR Pa Wie

1

RL Z KE

染料 烟草 严谨

盐酸

核糖 复合 蛋白

蛋白 消化 乙醇 沉淀

变性 系统

/二 / CZ Bt 乙酸

乙酸 生物

FF Ait. A A A

LT 146, 149 185

169, 271

314 92 119, 369, 385

128

4 260 hes

FR BE 33 122 引物 退火 241 引物 延伸 242 326 荧光 186 荧光 181 荧光 生成 5 -核酸 实验 289 荧光 161 溶剂 359 杂交 177, 178 杂交 154, 302 Z 185 增强 11 iE 133 真空 印迹 146 146 直接 191 植物 RNA 116 转录 9, 14 转录 调控 22 转录 基因 沉默 334 转录 22 转录 10 转录 速率 211 转录 5 转录 346 转录 346 转移 RNA 169 29 紫外 线 133 紫外 线 照射 151 蛋白 169, 271 样品 63 AMV 316 AP 体系 191 argonaute 334 BioMax 胶片 184 BLAST 350 5, b, 289

cDNA 229 cDNA 合成 229 cDNA 末端 快速 258 Centricon 系列 168 Church 印迹 107 cpRNA 38 CsCl 梯度 离心 方法 47 CsTFA 50 DBM 纤维 143 DDBJ 349 DDPCR 307 ddRNAi 334 ddRNAi 338 DEPC 30 Dicer 334 DIG 标记 系统 193 ADNA 95 DNA 斑点 印迹 101 DNA 231 DNA 聚合 230 dsRNA 3384330337 dsRNAi 334 DTT 28 Dynabeads 80, 81 EB 染色 286 ECL 系统 191 EcoRI 231 Elutip-d 168 EMBL 349 FOTO/Analyst Archiver Eclipse 工作 136 Forster 共振 290 G& 10 GC & 10 (G-+C)! FB 174 Gel-Pro 136, 137 GelStar 122 Genius 试剂 193 GRAIL 350 hnRNA 354 Hogness & 10 Klenow 片段 230 Kornberg fff 230 Lumi-Phos 480 192 Lumi-Phos 530 192

RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 研究 方法

Lumi-Phos Plus 192 RNA 聚合 [ 13 MALDI 348 | RNA 聚合 13 miRNA 334 RNA 灵敏 指标 269 mRNA 38 | RNA 琼脂 电泳 90 mRNA 差异 显示 307 | RNA 166 mtRNA 38 RNA 诱导 沉默 复合 335 NCBI 349 | rRNA 105, 115 Northern 91, 96, 142, 321 | RT-PCR 96, 239, 245 NP-40 40. | 26S 蛋白酶 271 oligo(dT )~ fit in AF HER 87 | Sl 核酸 198, 231 oligo(dT)-# 4 84 | Sl 核酸 保护 201, 204 oligo(dT)-4 4E RK 86 SAGE 347 Optitrans 143 Sephadex G-25 107 O.T.C. 介质 66 | shRNA 335, 337, 338, 340 pAW108 272 | 18S rRNA 90, 115, 169, 271 PCR 163, 239, 273 | 28SrRNA 90, 115, 169, 271 pH 174 | SSC 178 poly (A)~ RNA 38, 88 | SSCP 321 poly(A) 尾巴 19,77 | SSPE _ 107, 178 Polytron 破碎 64 | STORM 860 荧光 131 PosiBlot 装置 146 | SYBR¢& 122 Pribnow & 10 | SYBR & 121, 369, 385 PTGS 334 | Tm fA Wi 4250 PVDF 144 | Taq RAB 2315) BIB. Aa Pwo 聚合 312 | TA RK k 7) 268 3'RACE 260 TATA . 10 RACE 258 | T4 DNA AB 4 288 RISC 335 | tRNA i272 RLM-RACE 259 | U6 335 RNAi 333, 335 | UA-6 紫外 吸收 检测 83 RNAlater 34, 72 Ultrafree 168 RNase 26 UNG 254 RNase H 230 3'UTR K 19 RNase 保护 197,206 | VDR 27, 34 RNasin 28 Western SS RNA 斑点 印迹 100 XAR 胶片 184 RNA 电泳 112 | ®X174 DNA 95 RNA 干扰 165, 333, 335 | XLS BH 184 RNA“ 73 | 射线 胶片 183 RNA 聚合 [ 13 | X 线 胶片 显影 182

414 -

生物 科学 书目

for)

108. 00

32. 00

120. 00

G.P. BSR F 检测 手册 “pe ER

(ARIA. V. 0. B. 蛋白 物理 25 HER 2007 B5 eR BE

生命 科学 指导 考研 指南 系列 —_ sae cae 生理 . 题解. 测试 [ ] 集中 2 ae 1

微生物 功能 基因 KH Bue SE 007 6 生物 实验 系列 “现代 实验 a ees eras ; 指南

系统 生物 基础 ( ) ata: 16 a Ee a ee if 生物 实验 PCR 技术 实验 指南 |[ ]C W. MIG S eTREMM BW | 8 | | oe og (原著 2 ) fl HE HALE ER

生物 实验 系列 植物 生物 技术 et te 手册 [ ] Het nel # shi 生物 实验 医学 微生物 实验 aad | Le ee ee 技术 生物 实验 系列 生物 安全 实验 建设 AE 2006 | 16| # | 49.00 0 公子 技术 周延 2005 16 39. 00 > gis lalate “ae braid 生物 实验 系列 生物 安全 指南 (原理 使 验证 ) 劲松 2005 16| 30. 00 生物 实验 系列 细胞 原理 [瑞士 ] 简明 手册 (Rafael Nunez) ccs Ulead DR i 生物 实验 系列 PCR 技术 原理

生物 实验 系列 -RNAi( 指南 ) 2004 16 78. 00 rs 2004 16 75. 00

tf 金森 编著 qi - 16 f 28. 00

for)

29. 00

69. 00 79. 00

eg Aa) SS

生物 实验 系列 现代 生物 科学 仪器

生物 实验 生物 实验 技术 ”主编 60. 00

2004 生物 实验 工程 实验 技术 重印

生物 信息 功能 基因 ( )

95. 00

= (Ns #e f S S lor}

现代 生物 技术 丛书 生物 传感器 aK FE 2006 现代 生物 技术 丛书 生物 芯片 技术 现代 生物 技术 丛书 生物 制药 技术 A EIR

现代 生物 技术 丛书 植物 细胞 工程

现代 生物 技术 丛书 蛋白

现代 生物 技术 丛书 基因 工程

现代 生物 技术 丛书 环境 生物 工程

现代 生物 技术 丛书 工程

现代 生物 技术 丛书 生物 技术 疾病 诊断

现代 生物 技术 丛书 工程

生物 信息 功能 基因 ( )

实用 生物 技术 丛书 动物 细胞 培养 技术

实用 生物 技术 丛书 基因 克隆 技术

实用 生物 技术 丛书 细胞 融合 技术

实用 生物 技术 丛书 生产

lara 现代 植物 科学 系列 植物 培养 导论 编著

生物 转化 (原著 ) a ee |

生物 仪器 实验 技术 Je Xe Bi

| Fs we 重组 蛋白 Hi AR 32

生物 体系 = ite ee EE: ; 重印 生物 芯片 (第 ) mK a eae ae cig 重印 生物 医学 传感器 检测 技术

2005 16 胚胎 干细胞 科学 治疗 潜力 概论 ale sgt is MP oops} Xe

[ JS. H.E. SRB 医用 BER MM

病毒 感染 生物 李琦

医用 基因 工程 Be Bi

药物 生物 信息 ( ) | 微生物 医学 :理论 技术 win AWE

国生 重印 生物 技术 投资 投资 生物 技术

海绵 形态 辞典

生物 技术 词汇 KALE fk

英汉 生物 技术 词汇

安利

邮购 电话 /传真 : 010-64518888 010-64518899 E-mail: yougou@cip. com. cn

需要 信息 : www. cip. com. cn

TO $0052970

<

he i X zeoy Ya 池河 RD |

ale

hd

ie A * * bd > oe x ce | . ® J , 72a | FE a ¢ ¥ 3 > a . it = Eee Anneal suitable pr = r ies id med 7 2 > = ee

RNA DNA 困难 RNA 核糖 DNA 脱氧 核糖 造成 RNA 稳定 RNA 完整 RNA 关键 ae > - ee E Farrell, Jr RNA 鉴定 实验 指南 -RNA 方法 > 操作 程序 阐明 实验 注意 ~… 帮助 RNA 作者 理解 RNA 正确 使 实验 程序 促进 RNA 开展

ss

ee Tn ee

~ ae re, Pe fy ‘i Ae oT,

RNA 鉴定 构成 生物 核心 领域 指南 收录 详细 介绍 许多 实验 验证 优化 实验 方案 RNA 鉴定 这些 方法 基因 表达 转录 转录 调控 研究 工作 指南 国内 RNA 专家 翻译 特色 :

RNA 方法 信息 RNAi ; 详细 解释 RNA 操作 实验 细节 ; 扩充 RT-PCR、RACE ;

针对 问题 穿

生物 生物 领域 专家 基础 农业 生物 技术 领域 RNA 相关 研究 获取 急需 RNA 技术 细节 判断 实验 问题 原因 采取 合理 解决

销售 ISBN 978-7-5025-9625- 5 |

ark 原版 RNA Methodologies: ae Se A Laboratory Guide for Isolation a and Characterization, }f (Elsevier . 2 销售 建议 生物 / 生物 技术

TZ 定价 : 63.00 6259" 7