Gayana

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THE HECKMAN BINDERY, INC.

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N. MANCHESTER, INDIANA

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GAYANA

INSTITUTO CENTRAL

DE
BIOLOGIA
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N 7
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BOTANICA ETA NO 94

ESTUDIO CUALITATIVO DEL FITOPLANCTON DE
LA LAGUNA VERDE CONCEPCION (CHILE)
EXCL. DIATOMEAS

Por

OSCAR PARRA B.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile dis 8

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
CHA 1 LE

CARLOS VON PLESSING B.

RECTOR
LORENZO GONZALEZ C. RENE RAMOS P.
VICERRECTOR SECRETARIO GENERAL
SUBROGANTE
ComIsióN EDITORA:
Mario Alarcón — Director del Instituto Central de Biología

Clodomiro Marticorena — Jefe del Departamento de Botánica
Jorge N. Artigas — Jefe del Departamento de Zoología

GAYANA

INSTITUTO CENTRAL
DE
BIOLOGIA

BOTANICA PETRA

N2 24
ESTUDIO CUALITATIVO DEL FITOPLANCTON

DE
LA LAGUNA VERDE CONCEPCION (CHILE)
EXCL. DIATOMEAS

Por

OSCAR PARRA B.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente
conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO. GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

ESTUDIO CUALITATIVO DEL FITOPLANCTON DE
LA LAGUNA VERDE CONCEPCION (CHILE)
EXCEL. DIATOMEAS

Por

OSCAR PARRA B.*

El fitoplancton estudiado corresponde a un ciclo anual de muestreo
efectuado en la Laguna Verde del Parque Hualpén, Concepción (36047'S y
7309'"W) entre los meses de octubre de 1969 y octubre de 1970. Esta laguna
no había sido estudiada anteriormente.

La recolección del material fue realizada por el autor y el Licenciado
P. Rivera, quien se encuentra preparando la Flora Diatomológica del lugar.
Se tomaron 13 muestras superficiales, con una red de 33 micrones de trama,
y fijadas posteriormente en formalina neutra al 5%.

La Laguna Verde es un cuerpo de agua dulce relativamente pequeño,
de más o menos 290 metros de largo y 85 metros de ancho, sus dimensiones
varían en invierno por efecto de las lluvias que se producen en esta época.
Su profundidad mayor no alcanza a los 3 metros (Fig. A).

* Departamento de Botánica, Instituto Central de Biología, Universidad de Concepción, Chile.

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CONCEPCION

Fig. A.— Laguna Verde del Parque Hualpén.

PARTE SISTEMATICA

FUNGI IMPERFECTI
PASTEURIACEAE

Planctomyces Gimesi 1924
Planctomyces bekefi¡ Gimesi (Fig. 1 y 2).

HUBER-PESTALOZZI, G., in Thienemann, Die Binengewasser, 16(1): 325-
327, fig. 285 a-b, 1938. WAWRIK, F., Sydowia, Ann. Myc. Ser. Il, 6 (1-4);
443, fig. 1, 1952. SKUJA, H., Nova Act. Reg. Sc. Ups., Ser. IV, 16(3): 22,
Lám. 1, fig. 29-41, 1955. HORTOBAGYI, T., Acta Phytopatologica, Acad.
Sc. Hung. I11(2), 1968, HORTOBAGYI, T. Studia Biol. Hung. 8: 25, fig. 95-
101, 1969.

Formas adultas de 18-22 mic. de diámetro, formas juveniles de 8-9 mic.
de diámetro. Filamentos de m/m 0.7-0.8 mic. de grosor y en sus extremos de
1-2 esporas (conidios) aproximadamente de 1.3-1.7 mic. de diámetro.

Distribución conocida para Chile.— Laguna Verde, Concepción (Parra
1972).

CYANOPHYTA

NOSTOCACEAE
Anabaena Bory 1822

Anabaena flos-aquae (Lyng.) De Brébisson (Fig. 3 y 4).

SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv. 57(1): 60, Lám. 10, fig. 2-
4, 1920. GEITLER, L. in Pascher, Die Sussw. Fl. Deutsch. 12: 322, fig. 379,
1925. GUARRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N.S.) Sec. Bot. 10: 300, Lám. 16,
fig. 1, 1968. GEITLER, L. in Rabenhorst's Krypt. Fl. Cyanophyta 14: 890,

fig. 571 a-b, 1932.

Células vegetativas de 2.5-3.5 mic. de ancho, de 3.5-5 mic. de largo.
Aquinetas solitarias de 5-7 mic. de ancho por 15-20 mic. de largo. Heterocistos
a veces terminales de 3-3.5 mic. de ancho por 5-7 mic. de largo.

Distribución conocida para Chile.— Lago Panguipulli, Riñihue (Tho-
masson 1955), Lago Todos los Santos (Thomasson 1963) y Santiago (Licuine
1963).

GARYSORHY TA

DYNOBRYACEAE
Dynobrion Ehrenberg 1835

Dinobryon divergens Ymhof (Fig. 5).

PASCHER, A. ¿n Pascher, Die Sissw. Fl. Deutsch. 2: 79, fig. 125, 1913. HUBER-
PESTALOZZI, G. in Thienemann, Die Binnengewasser, 16(2): 227, lám. 66,
fig 302, 1941.

Lórica de 6-10 mic. de ancho por 32-55 mic. de largo (18-28 mic. en la
parte superior y 14-22 mic. en la parte inferior o basal).

Distribución conocida para Chile.— Lago Panguipulli, Riñihue (Tho-
masson 1955), Lago Calafquén, “Todos los Santos, Llanquihue, Ranco, Puyehue,
Pichilafquén, Viilarrica, Lanalhue, Pellaifa y Laguna Chica de San Pedro
(Thomasson 1963).

SYNURACEAE
Mallomonas Perty 1951

No menos de dos especies de Mallomonas aparecieron en las muestras,
que no fueron identificadas.

Especies de este género han sido citadas para Chile por Thomasson 1963.

XANTHOPRAYTA

CHLOROBOTRYDACEAE
Chlorobotrys Bohlin 1901

Chlorobotrys regularis (W. West) Bohlin (Fig. 6).

SMITH, G. M., Bull. Wiss. Geol. and Nat. Hist. Surv. 57(1): 82, Lám. 15,
fig. 10, 1920. VISCHER, W. in Rabenhorst's Krypt. Fl. Heterokonten, 11: 653,
fig. 515-516, 1939. PASCHER, A. ¿nm Pascher, Die Siissw. Fl. Deutsch. 11: 49,
fig. 30 a-e, 1925.

Colonias de 2, 4, 8 ó 16 células. Diámetro celular de 7-10 mic.. Diámetro
.de la colonia de 35-90 mic..
Este género no había sido señalado para Chile.

Do pas

CHLOROPHYTA

VOLVOCACEAE
Pleodorina Shaw 1894

Pleodorina californica Shaw (Fig. 7).

SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 97, lám. 17,
fig. 1-5, 1920. PASCHER, A. in Pascher, Die Siissw. Fl. Deutsch. 4: 449,
fig. 408-412, 1927. PRESCOTT, G. W., Univ. lowa St,, 13: 49, 1931.
GUARRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N.S.) Sec. Bot., 10: Ei
fig. 5, 1968,

Células vegetativas de 10-20 mic. de diámetro. Colonias de m/m 140-
150 mic. de diámetro.
Este género no había sido señalado para Chile.

CHLOROCOCCACEAE
Polyedriopsis Schmidle 1898

Polyedriopsis spinulosa Schmidle 1898 (Fig. 8).

BRUNNTHALER, J. in Pascher, Siissw. Fl. Deutsch.,..5: 154, fig:-188, 195:
SMITH, G. M.,, Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 124, lám. 27,
fig. 7-8, 1920. PRESCOTT, G. W., Univ. Iowa St., 13: 64, lám. XIII, fig. 2,
1931.

Diámetro mayor de la célula 12-25 mic., largo de las setas m/m 40 mic..
Este género no había sido citado para Chile.

MICRACTINIACEAE
Micractintum Fresenius 1858

Micractinium pusillum Fresenius (Fig. 9).

SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 125, lám. 28,
fig. 1-3, 1920. PRESCOTT, G. W., Univ. Iowa St., 13: 61, lám. 13, fig. 10,
1931. GUARRERA et al., Rev. Mus, La Plata (N.S.) Sec. Bot., 10: 282, lám. 5,
fig. 10, 1969. HAUGHEY, A., N.Z.. J. mar. Freshwat. Res., 2: 751, fig. 9
(3 a-b), 1968.

Células con 1 a 5 setas. Diámetro celular (sin setas) 3-7 mic., largo de
las -setas 20-35 mic..
Distribución conocida para Chile.— Lago Peñuelas (Navarro y Avaria

1971).

E

Golenkinia Chodat 1894

Golenkinta radiata Chodat (Fig. 10).

BRUNNTHALER, J. in Pascher. Siisssw. Fl. Deutsch. 5: 117, fig. 83, 1915.
SMITH, G. M,, Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist, Surv., 57(1): 127, lám. 29,
fig. 2-3, 1920. PRESCOTT, G. W., Univ. Iowa St., 13: 59, lám. 11, fig. 18-19,
1931. GUARRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N.S.) Sec. Bot., 10: 250, lám. 3,
fig. 8 y 9, 1968. HAUGHEY, A., N.Z. J. mar. Freshwat. Res., 2: 739, fig. 6
(1 a-c), 1968.

Diámetro celular (sin setas) 7-15 mic., largo de las setas 25-45 m'c..
Distribución conocida para Chile: Estero Lenga (Rivera, Parra y Gon-
zález 1973).

OOCYSTACEAE
Selenastrum Reinsch 1867

Selenastrum gracile Reinsch (Fig. 11).

BRUNNTHALER, J. in Pascher, Die Sússw. Fl. Deutsoh., 5: 183, fig. 274,
1915. SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 133, lám. 31,
fig. 5; 1920: PRESCOTT, G. W., Univ: Towa St., 13: 79, lám. 17, ig. BSmE

Diámetro celular de 3-4.5 mic. de ancho por 16-28 mic. de largo.
Esta especie no había sido señalada para nuestro país.

Chodatella Lemmermann 1898
Chodatella longiseta Lemmemann (Fig. 12).

BRUNNTHALER, J. ¿in Pascher, Die Sússw. Fl. Deutsch., 5: 139, fig. 138,
1915. SMITA, G. M., Bull Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 19%
lám. 30, fig. 8 y 9, 1920,

Células de 3-5 mic de ancho por 5-8 mic. de largo, con 4 a 10 setas de
15-18 mic. de largo.

Esta especie no se conocía para nuestro país.
Chodatella quadriseta Lemmermann (Fig. 13).
BRUNNTHALER, J. in Pascher, Die Siissw. Fl. Deutsch., 5: 139, fig. 141,
1915. HORTOBAGYI, T., Studia Biol. Hung., 8: 82, fig. 169 y 170, 1969.

Células de 3-4 mic. de ancho por m/m 8 mic. de largo. Cuatro setas de
m/m 8-10 mic. de largo.

No se conocía esta especie para nuestro país.

is

Franceía Lemmermann 1898

Franceia droescheri (Lemmermann) G. M. Smith (Fig. 14).

BOURRELLY, P., Les Algues d'eau douce 1, Ed. N. Boubée K£ Cie.: 174,
fig. 5, lám. 26, 1966. GUARRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N.S.) Sec.
Bot. 10: 264, lám. 7, fig. 11, 1968,

Células de 5-8 mic. de ancho por 9-12 mic. de largo (sin setas). Setas
de 15-20 mic. de largo.

Este género no había sido citado para Chile,

Franceia ovalis (Francé) Lemmermann (Fig. 15).

BRUNNTHALER, J. in Pascher, Die Sússw. Fl. Deutsch., 5: 140, fig. 142, 1915.
SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist, Surv., 57(1): 131, lám. 31,
fig. 4, 1920, PRESCOTT, G. W., Univ. Iowa St., 13: 58, lám. 11, fig. 14, 1931.
GUARRERA et al., Rev. Mus La Plata (N.S.) Sec. Bot., 10; lám. 7, fig. 9
y 10, 1968.

Células de 7-10 mic. de ancho por 13-17 mic. de largo (sin setas). Setas
de 15-23 mic. de largo.

Treubaria Bernard 1908
Treubaria triappendiculata Bernard (Fig. 16).

BRUNNTHALER, J. in Pascher, Die Siissw. Fl. Deutsch., 5: 159, fig. 205,
1915. PRESCOTT, G. W., Univ. lowa Studies 13: 69, lám. 13, fig. 9, 1931.
GUARRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N.S.) Sec. Bot., 10: 260, lám: 5,
fig. 9, 1968. HORTOBAGYI, T., Studia Biol. Hung. 8: 46, fig. 163-165, 1969.

Células con tres a cuatro prolongaciones cónicas. Diámetro celular con
las prolongaciones de 8-12 mic., diámetro celular con las prolongaciones de
40-50 mic.. Prolongaciones de 20-35 mic. de largo y de 3-6 mic. de ancho en
su base.

Distribución conocida para Chile.— En pozas adyacentes al Lago Pellaifa
(Thomasson 1963).

Ankistrodesmus Corda 1838
Ankistrodesmus falcatus (Corda) Ralís (Fig. 17 y 18).

BRUNNTHALER, ]. in Pascher, Die Sissw. Fl. Deutsh., 5: 188, fig. 283,
1915. SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 134,
lám. 32, fig. 1, 1920. GUARRERA et al, Rev. Mus. La Plata (N.S.) Sec.
Bot., 10: 265, lám. 7, fig. 12, 1968. HAUGHEY, A., N.Z. J. Mar. Freshwat.
Res., 2: 744, fig. 8 (3), 1968. LEGNEROVA, J. in Fott., Studies in Phicology,
Stúttgart: 85, lám. 3, 1969.

Lis

Células de 20-26 mic. de largo por 1-2 mic. de ancho.
Distribución conocida para Chile.— Santiago (Espinoza 1923); Lago Pi-
chilafquén (Fhomasson 1963); Lago Peñuela (Navarro y Avaria 1971).

DICTYOSPHAERIACEAE
Dictyosphaerium Nageli 1849

Dictyosphaerium pulchellum Wood (Fig. 29).

BRUNNTHALER, J. in Pascher, Die Siissw. Fl. Deutsch., 5: 184, fig. 277,
1915. SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 105, lám. 20,
fig. 13, 1520. HORTOBAGYI, T., Studia Biol. Hung., 8: 40, fig. 211, 1969.

Diámetro celular de 5-10 mic..
Distribución conocida para Chile.— Lago Panguipulli, Riñihue (Tho-

masson 1955) y Lago Todos los Santos, Pichilafquén, Llanquihue, Villarrica,
Lanalhue, Pellaifa (i'homasson 1963).

HIDRODICTYACEAE
Pediastrum Meyen 1829

Pediastrum duplex Meyen (Fig. 20 y 21).

BRUNNTHALER, J. in Pascher, Die Siússw. Fl. Deutsch., 5: 95, fig. 57, 1915.
SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 171, lám. 46,
fig. 14-16, 1920. PRESCOTT, G. W., Univ. Iowa St., 13: 55, lám. 10, fig. 5,
1931. GUARRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N.S.) Sec. Bot., 10, lám. 4,

fig. 7, 12 y 13, 1968. SULEK, J. in Fott, Studies in Phycology, Stittgart, 212,
lám. 3-4, 1969.

Cenob:os de 8, 16 y 32 células. Diámetro celular de 16-17 micrones.

Distribución conocida para Chile.— Santiago (Espinosa, 1923), Lago Pe-
llaifa, Pichilafquén, Todos los Santos y Villarrica (Thomasson 1963) y Lago
Peñuela (Navarro y Avaria 1971).

SCENEDESMACEAE
Tetradesmus G. M. Smith 1913
Tetradesmus wisconsinensis G. M. Smith (Fig. 22).

SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 150, lám. 37,
fig. 7-11, 1920. BRUNNTHALER, ]. in Pascher, Die Stissw. Fl. Deutsch, 5:

160, fig. 208, 1915. PRESCOTT, G. W., Univ. Iowa St. 13: 79, lám. 17,
fig. 9 y 10, 1931.

Ta

Células de 4-5 mic. de ancho por 10-13 mic. de largo.

Distribución conocida para Chile.— Lago Todos los Santos, Pellaifa
(Thomasson 1963).

Scenedesmus Meyen 1829

Scenedesmus dimorphus (Turpin) Kútzing (Fig. 23).

SMITH, G. M., Trans. Wis. Acad. Sci. Arts 8: Lett., 18(2): 434, lám. 32,
fig. 185-189, lám. 33, fig. 190-195, 1916. SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and
Nat. Hist. Surv., 57(1): 155, fig. 15-17, 1920. CHODAT, R., Rev. d'Hydro-
logie 3: 128, fig. 20, 1926. PRESCOTT, G. W., Univ. Iowa St., 13: 76, lám. 16,
Mp22 y 23,. 1931.

Cenobios de 4 células. Células de 4-7 mic. de ancho por 20-24 mic. de
largo.

Esta especie no había sido señalada para Chile.

Scenedesmus ellipsoideus Chodat (Fig. 24).

CHODAT, R., Rev. d'Hydrologie 3: 240, fig. 145 y 146, 1926. UHERKOVICH,
G., Die Scenedesmus-Arten Ungarns, Budapest: 90, lám. 13, fig. 543-544, 1966.
Células de 8-10 mic. de ancho por 22-26 mic. de largo. Espinas margi-
nales de 20-22 mic. de largo.
Esta especie no había sido señalada para Chile.

Scenedesmus obliquus (Turpin) Kútzing (Fig. 25).

BRUNNTHALER, J. in Pascher, Die Sissw. Fl. Deutsch., 5: 163, fig. 208,
1915. SMITH, G. M., Trans. Wis. Acad. Sci. Arts £ Lett. 18(2): 428, lám. 25,
fig. 7; lám. 29, fig. 63-68, 1916. SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol. and Nat.
Hist. Surv., 57(1): 151, lám. 37, fig. 12-14, 1920. CHODAT, R., Rev. d'Hydro-
logie 3: 113, 126. PRESCOTT, G. W., Univ. Iowa St. 13: 77, lám. 16, fig. 26,
1931. GUARRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N.S.), Sci. Bot. 10: 276, lám. 8,
fig. 24 y 33, 1968.

Cenobios de 2-4 células. Células de 4-6 mic. de ancho por 12-17 mic.
de largo.

Distribución conocida para Chile.— Santiago (Espinoza 1923).

Scenedesmus opoliensis P. Richter (Fig. 26).

SMITH, G. M., Trans. Wis. Acad. Sci. Arts £ Lett. 18(2): 481, lám. 27, fig. 49;
lám. 32, fig. 181-184, 1916. SMITH, G M., Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv.,
57(1): 159, lám. 41, fig. 8-11, 1920. CHODAT, R., Rev. d' Hydrologie 3: 209,

A y

1926. PRESCOTT, G. W., Univ. lowa St., 13: 77, lám. 17, fig. 1, 1931.
UHERKOVIC, G., Die Scenedesmus-Arten Ungarns, Budapest: 96, lám. 15,
fig. 618-630, 1966. GUARRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N. S.) Sec. Bot.
10: 276, lám. 8, fig. 15, 1968.

Cenobios de 2-4 a 8 células. Células de 5-7 mic. de ancho por 12-22 mic.
de largo. Espinas de 5-20 mic. de largo.

Esta especie no había sido señalada para Chile.

Scenedesmus quadricauda (Turpin) de Brébisson (Fig. 27).

SMITH, G. M., Trans. Wis. Acad. Sci. Arts £ Lett. 18(2): 473477, lám. 27,
fig. 39; lám. 31, fig. 172-175; lám. 32, fig. :176, 1916. SMITH, G. M., Bull.
Wis. Geol. and Nat. Hist. Surv., 57(1): 158, lám. 40, fig. 9-11, 1920. CHODAT,
R., Rev. d Hydrobiologie 3: 229-230, fig. 133, 1926. UHERKOVIC, G., Die
Scenedesmus-Arten Ungarns, Budapest: 78, lám. 10, fig. 446-460, 1966. GUA-
RRERA et al., Rev. Mus. La Plata (N.S.), Sec. Bot. 10: 277, lám. 8, fig. 32,
lám. 9, fig. 1, 2 y 7. 1968.

Cenobios de 2-4 a 8 células. Células de 3-5 mic. de ancho por 8-16 mic.
de largo. Espinas de 12-20 mic. de largo.

Distribución conocida para Chile.— Santiago (Espinoza 1923); Santiago
(Solaril963) y Lago Pichilafquén, Pellaifa y Todos los Santos (T'homasson
1953); Lago Peñuela (Navarro y Avaria 1971); Estero Lenga (Parra y Gon-
zález in Rivera, Parra y González 1973).

Scenedesmus quadricauda (Turpin) de Brébisson f. granulatus Hortobagyi
(Fig. 28).

HORTOBAGYI, T., Studia Biol. Hung. 8: 58, lám. 29, fig. 400-404, 1969.
UHERKOVICH, G., Die Scenedesmus-Arten Ungarns, Budapest: 86, lám. 13,
fig. 513-518, 1966.

Cenobios de 2-4 a 8 células. Células de 8-13 mic. de ancho por 22-29 mic.
largo. Espinas de las células marginales de 16-23 mic. de largo.
Distribución conocida para Chile.— Estero Lenga (Rivera, Parra y Gon-
zález 1972).

Q

a
(9)

Scenedesmus spinosus Chodat (Fig. 29 y 30).

CHODAT, R., Rev. d'Hydrologie 3: 216, fig. 120, 1926. UHERKOVIC, G.,
Die Scenedesmus-Arten Ungarns, Budapest: 107, lám. 18, fig. 709-747;lám. 19,
fig. 748-750, 1966. HORTOBAGYI, T., Bot. Kozlem., 54(1): 11, lám. 1, fig. 1-3,
1967. HORTOBAGYI, T., Studia Biol. Hung. 8: 57, lám. 28, fig. 388-389,
1969.

Cenobios de 2-4 células. Células de 1.5-4.5 mic. de ancho por 5-10 mic.
de largo. Espinas polares de las células terminales de 5-10 mic. de largo.
No había sido citada para nuestro país,

DESMIDIACEAE
Arthrodesmus Ehrenberg 1838

Arthrodesmus octocornis Ehrenberg (Fig. 31).

SMITH, G. M,, Bull. Wis. Geol. and Nat. Hist Surv. 57(2): 134, lám. 86,
fig. 8-12, 1924. HIRANO, M., Contr. Biol. Lab. Kyoto Univ., 5: 214, lám. 29,
fig. 32, 1957. SKUJA, H., Nov. Act. Reg. Soc. Sci. Ups., Ser. 4, 18(3): 228,
lám. 41, fig. 5, 1964.

Largo sin procesos 12-13 mic.. Ancho sin procesos 8-10 mic.. Largo de los
procesos 7-9 mic.. Itsmo de 2.5-4.5 mic..
No había sido señalada para nuestro país.

Closterium Nitzsch

Closterium acutum Breb. (Fig. 32 y 33).

KRIEGER, W., in Rabenhorst's Krypt. Fl. 13(1-4): 259-260, lám. 13, fig. 10-13,
1937. HIRANO, M., Contr. Biol. Lab. Kyoto Univ. 1: 34, lám. 4, fig. 25, 1955.
Largo de 145-225 mic.. Ancho de 5-6 mic..

Distribución conocida para Chile.— Lago Todos los Santos (Thomasson
1963); Lago Peñuela (Navarro y Avaria 1971).

Cosmaritum Corda 1834
Cosmarium regnesii Reinsch (Fig. 34 y 35)

SKUJA, H., Nova Acta Reg. Soc. Sci. Ups., Ser. IV, 16(3): 212, lám. 35, fig. 20,
1956. HIRANO, M., Contr. Biol. Lab. Kyoto Univ., 4: 152, lám. 25, fig. 36,
1957.

Largo 6.5-8 mic.. Ancho de 6.5-7 mic.. Itsmo 3-4 mic..

Distribución conocida para Chile.— Lago Pellaifa, Pichilafquén y Villa-
rrica (Thomasson 1963).

Staurastrum Meyen 1829
Staurastrum crenulatum (Nageli) Delp. (Fig. 36)
HIRANO, M., Contr. Biol. Lab. Kyoto Univ., 9: 349, lám. 43, fig. 18, 1959.
HINODE, T., Hikobia 4(3): 199, lám. 10, fig. 28, 1965.

= EL

Long. sin procesos 16-18 mic.. Lat. sin procesos 10 mic.. Itsmo 5.5-7 mic..
Esta especie no había sido señalada para nuestro país.

Staurastrum ¿otanum Wolle

HIRANO, M., Contr. Biol. Lab. Kyoto Univ., 9: 351, lám. 44, fig. 3, 1959.
FORSTER, K., Amazonia 2(1-2): 85, lám. 40, fig. 4, 1969,
Long. sin procesos 11-12 mic.. Long. con procesos 18-23 mic.. Lat. sin
procesos 9-10 mic.. Lat. con procesos 18-21 mic.. Itsmo 4-6 mic..
Distribución conocida para Chile.— Lago Pellaifa (Thomasson 1963).

Staurastrum irregulare West £ West (Fig. 37)

FORSTER, K., Amazonia 2(1-2): 85, lám. 36, fig. 5-6, 1969.

Long. sin procesos 8.5-10 mic.. Long. con procesos 22-26 mic.. Lat. sin
procesos 8-9 mic.. Lat. con procesos 19-25 mic.. Itsmo 5-6 mic..

Esta especie no había sido citada para nuestro país.

Staurastrum iversent Nygaard (Fig. 38)

NYGAARD, G., 2, K. danske vidensk. Selsk., Biol. Skrifter, 7(1): 96, fig. 49,
1949.

Long. sin procesos 12-16 mic.. Long. con procesos 24-38 mic.. Lat. sin
procesos 8-13 mic.. Lat. con procesos 32-48 mic.. Itsmo 2.5-5 mic..

Esta especie no había sido citada para nuestro país.

Staurastrum tversenti Nygaard var. americanum Scott y Gronblad (Fig.39)

SCOTT y GRONBLAD, Acta Soc. Sci. Fenn. N.S. 2(8): 39, lám. 19, fig. 14-15,
1957.

Long. sin procesos 13-16 mic.. Long. con procesos 30-35 mic.. Lat. sin
procesos 9-11.5 mic.. Lat. con procesos 30-40 mic.. Itsmo 5 mic..

No había sido citada anteriormente.

Staurastrum leptocladum Nordsted (Fig. 40)

HIRANO, M., Contr. Biol. Lab. Kyoto Univ. 9: 377, lám. 50, fig. 6, 1959,
SMITH, G. M., Bull. Wis. Geol and Nat. Hist. Surv. 57(2): 102, lám. 78,
fig. 1-7, 1924.
Long. sin procesos 20-31 mic.. Long. con procesos 40-52 mic.. Lat. sin
procesos 8-17 mic.. Lat. con procesos 54-76 mic.. Itsmo 3.5-6.5 mic..
Distribución conocida para Chile.— Pichilafquén y Villarrica (Thomasson
1963); Lago Peñuela (Navarro y Avaria 1971).

¿

dde

Staurastrum polymorphum De Brébisson (Fig. 41 y 42)

SKUJA, H., Nova Acta Reg. Soc. Sci. Ups., Ser. IV, 18(3): 260, lám. 52, fig. 11,
1964, HIRANO, M., Contr. Biol. Lab Kyoto Univ., 9: 345, lám. 43, fig. 22,
1959.
Long. sin procesos 23-30 mic.. Lat. con procesos 28-42 mic.. Itsmo 8-10 mic.
Esta especie no había sido citada para Chile.

Staurastrum smithii Teiling (Fig. 43)

NYGAARD, G., 2, K. danske vidensk. Selsk., Biol. Skrifter, 7(1): 84, fig. 40
a-d, 1949.
Long. sin procesos 9.5-13 mic.. Long. con procesos 29-32 mic.. Lat. sin
procesos 9.5-10 mic. Lat. con procesos 30-35 mic.. lItsmo 4.5-6 xmic..
Distribución conocida para Chile.— Lago Todos los Santos y Llanquihue
(Thomasson 1963).

Staurastrum tetracerum Ralís (Fig. 44 y 45)

SMITH, G. M., Bull Wis. Geol. and Nat.Hist.Surv.57(2):96,fig.tex.11,1924.
HIRANO, M., Contr. Biol. Lab. Kyoto Univ. 9: 352, lám. 43, fig. 25-27, 1959.
HINODE, T., Hikobia 4(3): 203, lám. 10, fig. 25, 1965. GRONBLAD, SCOTT
y CROASDALE, Acta Bot. Fenn. 78: 25, lám. 9, fig. 140-141, 1968.

Long. sin procesos 9-10 mic.. Long. con procesos 25-30 mic.. Lat. con
procesos 25-32 mic.. Itsmo 3.5-6 mic..

Distribución conocida para Chile.— Lago Villarrica, Pichilafquén y Pe-
llaifa (Phomasson 1963); Lago Peñuela (Navarro y Avaria 1971).

Staurastrum tetracerum Ralís var. biverruciferum Gronblad (Fig. 46)

NYGAARD, G., 2, K. danske vidensk. Selsk., Biol. Skrifter, 7(1): 85, fig. 40 e-h.
1949.

Long. sin procesos 9-10 mic.. Long. con procesos 25-29 mic.. Lat. sin
procesos 7-10 mic.. Lat. con procesos 25-31 mic.. Itsmo 4-6 mic..

No había sido citada para Chile.

Staurastrum tetracerum Ralfs. f. trigona Lund.

IRENEE-MARIE, F., Hydrobiologia 4(1-2): 97, lám. 9, fig. 6, 1952. HIRANO,
M., Contr. Biol. Lab. Kyoto Univ. 9: 353, lám. 44, fig. 6, 1959. HINODE, M..
Hikobia 4(3): 204, lám. 10, fig. 26, 1965.

Long.19-21 mic.. Lat. 20-23 mic.. Itsmo 5-6 mic..

Distribución conocida para Chile.— Lago Peilaifa (Thomasson 1963).

A

RESUMEN

El fitoplancton estudiado corresponde a 13 muestras de la Laguna Verde,
Concepción, Chile, en las que se identificaron 35 especies de Fungi, Chryso-
phyceae, Cyanophyta y Chlorophyta, de las cuales 4 géneros, 16 especies
y 2 variedades se citan por primera vez para nuestro país, y que son:
Chlorobotrys regularis, Pleodorina californica, Polyedriopsis spinulosa, Sele-
nastrum gracile, Chodatella longiseta, Chodatella quadriseta, France
droescheri, Franceia ovalis, Scenedesmus dimporphus, Scenedesmus ellipsoideus,
Scenedesmus opoliensis, Scenedesmus spinosus, Arthrodesmus octocornis,
Staurastrum irregulare, Staurastrum iverseni, Staurastrum iversenúi var.
americanum, Staurastrum polymorphum, Staurastrum tetracerum var. bive-

rruciferum.

ABSTRACT

Thirteen phytoplankton samples collected in Laguna Verde, Concepción,
Chile, were studied. 35 species, 2 forms and 2 varieties of Fungi, Cyanophyta,
Chrysophyceae and Chlorophyta were found. Four genera, sixteen species and
two varieties are new records for the microflora of Chile. These taxa are:
Chlorobotrys regularis, Pleodorina californica, Polyedriopsis spinulosa, Sele-
nastrum gracile, Chodatella longiseta, Chodatella quadriseta, Franceta
droescheri, Franceia ovalis, Scenedesmus dimporphus, Scenedesmus ellipsoideus,
Scenedesmus opoliensis, Scenedesmus spinosus, Arthrodesmus octocornis,
Staurastrum irregulare, Staurastrum tversenú, Staurastrum iversenti var.
americanum, Staurastrum polymorphum, Staurastrum tetracerum var. bive-

rruciferum.

AGRADECIMIENTOS

Agradezco al Dr. K. Thomasson (Uppsala Universitet) por su ayuda en
la clasificación de algunas especies de Staurastrum, así como también al
Dibujante de nuestro Departamento de Botánica, Sr. Fernando Calvo.

GEL

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JANE

LAMINAS

La línea en negro de cada figura corresponde a 10 micrones

E

LAMINA 1.

Fig. 1-2. -- Planctomyces bekefii Gimesi

Fig. 3-4.— Anabaena flos-aquae (Lyng.) De Brébisson
Fig. 5.— Dinob,yon divergens Ymhof

Fig. 6.— Chlorobotrys regularis (W. West) Bohlin
Fig. 7.— Pleodorina californica Shaw

Fig. 8.— Polyedriopsis spinulosa Schmidle

Fig. 9.— Micractinium pusillum Fresenius

Fig. 10.— Golenkinia radiata Chodat

Fig. 11.— Selenastrum gracile Reinsch

Fig. 12.— Chodatella longiseta Lemmermann

Fig. 13.— Chodatella quadriseta Lemmermann

cal JO

LAMINA 2.

Fig. 14— Franceia droescheri (Lemmermann) G. M. Smith
Fig. 15.— Franceia ovalis (Francé) Lemmermann

Fig. 16.— Treubaria triappendiculata Bernard

Fig. 17-18.— Ankistrodesmus falcatus (Corda) Ralfs

Fig. 19— Dictyosphaerium pulchellum Wood

Fig. 20-21.— Pediastrum duplex Meyen

Fig. 22— Tetradesmus wisconsinensis G. M. Smith

Fig. 23.— Scenedesmus dimorphus (Turpin) Kútzing

Fig. 24— Scenedesmus ellipsoideus Chodat

Fig. 25.— Scenedesmus obliquus (Purpin) Kuútzing

Fig. 26.— Scenedesmus opoliensis P. Richter

Fig. 27.— Scenedesmus quadricauda (Turpin) de Brébisson
Fig. 28.— Scenedesmus quadricauda f. granulatus Hortobagyi
Fig. 29-30.— Scenedesmus spinosus Chodat

AS

LAMINA 2

LAMINA. 3.

Fig. 31.— Arthrodesmus octocornis Ehrenberg

Fig. 32-35.— Closterium acutum Bréb.

Fig. 34-35.— Cosmartum regnesil Reinsch

Fig. 36.— Staurastrum crenulatum (Nageli) Delp.

Fig. 37.— : Staurastrum irregulare West Ek West

Fig. 38.— Staurastrum tverseni Nygaard

Fig. 39.— Staurastrum iversenii var. americanum Scott y Gronblad
Fig. 40.— Staurastrum leptocladum Nordsted

Fig. 41-42.— Staurastrum polymorphum De Brébisson

Fig. 43— — Staurastrum smithii Teiling

Fig. 44-45.— Staurastrum tetracerum Ralfs

Fig. 46.— Staurastrum tetracerum var. biverruciferum Gronblad

LAMINA 3

— a SS AS:

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR
EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE GCONCEPCION, EL
13 DE JUNIO DE 19758:

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones originales del personal científico del Instituto Central

de Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica y otra
Zoológica, incluyéndose dentro de cada Serie trabajos bio-
lógicos en su sentido más amplio, es decir, si un trabajo
versa básicamente sobre plantas o animales, se incluirá

dentro de una de las dos categorías.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tendrá una secuencia periódica, sino que
los números se publicarán tan pronto como la Comisión
Editora reciba las comunicaciones y su numeración será

continuada dentro de cada Serie.

La Comisión Editora agradece profunda y sinceramente
el valioso apoyo del señor Rector y autoridades universi-

tarias.

Gayana

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DIATOMEAS EPIFITAS EN GRACILARIA VERRUCOSA
(HUDSON) PAPENFUSS RECOLECTADA EN
LA COSTA CHILENA

Por

PATRICIO RIVERA R.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
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DIRECTOR : Mario Alarcón A.
EDITORES
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DIATOMEAS EPIFITAS EN GRACILARIA VERRUCOSA
(HUDSON) PAPENFUSS RECOLECTADA EN
LA COSTA CHILENA

Por

PATRICIO RIVERA R.

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Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente
conocerse sino luego que los sabios del pais hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, 1 : 14 (1848).

DIATOMEAS EPIFITAS EN GRACILARIA VERRUCOSA
(HUDSON) PAPENFUSS RECOLECTADA EN LA
COSTA CHILENA *

POR

PATRICIO RIVERA R.**

RESUMEN

Se hace un estudio taxonómico de la flora diatomológica epífita en
Gracilaria verrucosa (Hudson) Papenfuss, vulgarmente llamada pelillo, re-
colectada en la zona Norte, Central y Sur de la costa chilena.

Se determinó un total de 146 taxa de diatomeas, siete de los cuales
resultaron ser nuevos para la Ciencia, y 33 son señalados por primera vez
para el país.

Los géneros que agruparon el mayor número de taxa para cada lugar
“estudiado fueron Cocconeis, Navicula, Nitzschia y Grammatophora.

Los taxa más característicos de la flora epífita del pelillo fueron:
Cocconeis scutellum, C. scutellum var. stauroneiformis, Grammatophora
marina, Gomphonema pseudoexiguum, Navicula tubulifera, Rhabdonema
arcuatum y Opephora marina. Siempre se presentaron en gran cantidad y
en todas las muestras estudiadas.

Una especie y una variedad de Silicoflagelados fueron también de-
terminadas.

Esta investigación fue financiada, en parte, gracias a los aportes del Convenio Universidad
de Concepción - CORFO (IFOP), “Las algas marinas industrializables del litoral chileno”,
Subprograma Taxonomía.

** Departamento de Botánica, Universidad de Concepción, Chile.

e

SUMMARY

The Diatom epiphytic flora found on Gracilaria verrucosa (Hudson)
Papenfuss, n. v. “Pelillo”, was examined. Gracilaria was collected in the
North, Central and South coast of Chile.

One hundred and forty six diatoms taxa were determined, 7 are new
taxa, 33 are new records for Chile.

Cocconeis, Navicula, Nitzschia and Grammatophora were the most pre-
dominant genera in each sample.

The most common species and varieties found on Gracilaria were:
Cocconeis scutellum, C. scutellum var. stauroneiformis, Grammatophora
marina, Gomphonema pseudoexiguum, Navicula tubulifera, Rhabdonema
arcuatum and Opephora marina.

Two taxa of Silicoflagelates were also determined and found to be
scarce.

INTRODUCCION

Las algas marinas son de gran importancia para el hombre debido a
las múltiples utilidades que ellas prestan.

Desde épocas lejanas se les ha utilizado en la medicina, como ferti-
lizantes y como fuente alimentaria. En Chile sólo tres especies se aprovechan
con este fin: Durvillea antárctica (Phaeophyta), conocida vulgarmente como
“Cochayuyo”, Porphyra columbina o “Luche” (Rhodophyta) y un alga verde
(Chlorophyta) también llamada “Luche” que es la Ulva lactuca.

Actualmente las algas marinas se han convertido en importante fuente
de materias primas para la industria.

Nuestro país está utilizando y exportando Gracilaria verrucosa (Hudson)
Papenfuss principalmente para la extracción de Agar-Agar.

Por otra parte, las algas superiores constituyen un excelente substrato
para el desarrollo de otros organismos, principalmente para las diatomeas
que se encuentran a veces en gran cantidad sobre ellas.

En Chile nada se sabe de la flora diatomológica que vive epifita en
algas superiores, con excepción de la publicación de Kim (1970) sobre la
importancia económica de las algas marinas en Chile, donde señala especies
de diatomeas epífitas en Gracilaria: Grammatophora marina, y Cocconeis
scutellum.

El objetivo de este trabajo es realizar un estudio sistemático de las
diatomeas epífitas de Gracilaria verrucosa. Estudios similares al que aquí pre-
sentamos se han desarrollado intensamente en otros países. Entre ellos cabe
señalar a Moreira (1959) quien hace un estudio sistemático de la flora diato-

és li

mológica de Sargassum cymosum Ag. var. stenophyllum (Mert.) Grun, con
material recolectado en Caioba, Brasil. Hideaki Takano (1961) estudia las
diatomeas epífitas de algas productoras de Agar-Agar recolectadas en Japón.
En 1962 continúa con este tipo de estudios, analizando las epífitas de nuevas
algas recolectadas en trece lugares de la costa japonesa.

Kutner (1961) analiza también las diatomeas encontradas sobre algas
superiores pertenecientes a los géneros Centroceras, Ectocarpus y Caulerpa,
todas ellas recolectadas en el estado de Sao Paulo, Brasil. Moreira (1966) analiza
36 muestras de Agar-Agar y 5 de Agarófitos provenientes de diversos países,
determinando 127 especies de diatomeas. Fernández (1971) estudia las dia-
tomeas epifitas de algas marinas litorales del norte del Perú, las que alcanzan
un total de 31 taxa.

El trabajo que aquí exponemos pretende dar una idea general sobre
la flora diatomólogica epífita del pelillo. Un mayor número de muestras y el
estudio de otros lugares sería necesario para completar dicho conocimiento.

A todas las personas que directa o indirectamente me ayudaron a realizar
este estudio vayan mis más sinceros agradecimientos.

AREA ESTUDIADA, MATERIALES Y METODOS

Las muestras de Gracilaria verrucosa estudiadas fueron extraídas por
personal del Instituto Central de Biología de la Universidad de Concepción,
durante el desarrollo del convenio Universidad de Concepción - CORFO
(IFOP), “Las algas marinas industrializables del litoral chileno”.

Se trata de 36 muestras de alga seca provenientes de nueve lugares del
litoral chileno (Mapa 1):

a) Zona Norte: Bahía de Coquimbo (29053'S, 71019"W)

b) Zona Central: Bahía de Dichato (36033'S, 72056"W)
Bahía de Concepción (36042”S, 73002"'W)
Estero Lenga (36046'S, 73011"W)
Isla Santa María (37002'S, 73033"W)
Río Tubul (37014'S, 73029'W)
c) Zona Sur: Río Quenuir (41031'S, 73042"W)
Golfo de Quetalmahue (41052'S, 73052"W)
Río Pudeto (41052'S, 73049'W

Se analizaron cuatro muestras para cada uno de estos lugares, las que
se tomaron de forma que correspondieran con cada una de las estaciones del
año, con el objeto de obtener una idea general de la variación estacional
de las especies.

El material seco de “pelilio” fue sometido a una oxidación fuerte con
el objeto de destruir la materia orgánica y permitir así una visión precisa
de las ornamentaciones del frústulo de las diatomeas. Para esto se siguió el
método de Múller-Melchers y Fernando (1956).

Otra fracción del mismo material se la sometió, antes de la oxidación,
a una fuerte agitación para lograr el desprendimiento de los frústulos del
alga en que se encontraban adheridas. Con el material diatomólogico final-
mente obtenido se confeccionaron preparaciones usándose Hyrax (Indice de
refracción 1.7) como medio de inclusión.

El análisis de cada especie comprende referencias bibliográficas, des-
cripción en el caso que la especie no haya sido señalada para Chile o lo haya
sido en forma muy superficial, medidas, dibujos, fotomicrografías, datos eco-
lógicos y distribución en Chile.

RESULTADOS

Un total de 146 taxa de diatomeas fueron determinados en las muestras
analizadas, de los cuales los siguientes siete taxa resultaron ser nuevos para
la ciencia:

Achnanthes robusta sp. nov.

Cocconeis nortina sp. nov.

Cocconeis formosa Brun var. marina var. nov.

Synedra gaillonii (Bory) Ehr. var. densestriata var. nov.
Navicula litoris Salah var. irregulata var. nov.

Navicula stankovici Hust. var. chilensis var. nov.

Nitzschia acuminata (W. Sm.) Grun. var. densestriata var. nov.

Los silicoflagelados también se hicieron presentes en algunas muestras,
pero en forma muy escasa, determinándose una especie y una variedad:

Distephanus speculum var. speculum, encontrada en una muestra pro-
veniente del Río Quenuir, y

Distephanus speculum var. septenarius, encontrada en una muestra del
Estero Lenga.

Los siguientes 33 taxa son señalados por primera vez para Chile:

Achnanthes exigua Grunow var. constricta Hust.
Achnanthes tempere: M. Peragallo var. tempere:

Amphora bongramniúi M. Peragallo var. bongraimu
Amphora exigua Gregory var. exigua

Amphora ostrearia Bréb, var. ostrearia

Asterionella formosa Hass. var. gracillima (Hantz.) Grunow
Caloneis oregónica (Ehr.) Patrick var. oregónica

Cocconeis costata Greg. var. hexagona Grunow

Cocconeis pseudomarginata Greg. var. pseudomarginata
Cymbella aequalis W. Sm. var. aequalis

Diatoma elongatum (Lyng.) Ag. var. tenuis (Ag.) V. Heurck

f. minus (Grun.) Max.

Diploneis incurvata (Greg.) Cleve var. imcurvata

Diploneis papula (Sch.) Cleve var. constricta Hust.

Eunotia exigua (Bréb.) Rabenh. var. tridentula Ostrup.
Gyrosigma tenuissimum W. Sm. var. angustissima Simonsen
Lichmophora flabellata (Grev.) Ag. var. flabellata

Navicula accomoda Hust. var. accomoda

Navicula forcipata Grev. var. densestriata A. S.

Navicula libellus Greg. var. libellus

Navicula observabilis Heiden £ Kolbe var. observabilis
Navicula rhynchocephala Kitz. var. amphiceros (Kútz.) Grun.
Navicula tubulifera Geissler £ Gerloff var. tubulifera
Nitzschia constricta Ralís f. parva V. Heurck

Opephora lineata Edsbagge var. lineata

Pinnularia viridis (Nitz.) Ehr. var. minor Cleve
Plagiogramma interruptum (Greg.) Ralfs var. interruptum
Stauroneis desiderata Cleve var. desiderata

Stauroneis lapponica Cleve-Euler var. lapponica

Surirella ovalis Breb. var. salina (W. Sm.) V. Heurck
Synedra fasciculata (Ag.) Kútz. var. truncata (Grev.) Patrick
Synedra fulgens (Grev.) W. Sm. var. mediterranea Grunow
Trachyneis aspera (Ehr.) Cleve var. elliptica Hendey
Trachysphenia australis Petit var. aucklandica Grunow

Del análisis de la TaBLa 1, se desprende una serie de conclusiones
sobre la distribución en nuestro material de los taxa determinados:

Algunas especies y variedades estuvieron presentes en todas las mues-
tras estudiadas tanto de la zona norte, de la zona central y de la zona sur
del país. Debemos aclarar aquí, que si bien es cierto no se realizó un estudio
cuantitativo preciso, fue posible indicar, para cada muestra estudiada, el grado
de abundancia relativa de los taxa que la componían, bajo la siguiente escala:
muy abundante, abundante, escaso y raro. Debido a que los taxa presentes
en todas las muestras tuvieron una abundancia de “muy abundante”, pasan
a constituir las diatomeas epífitas más características de Gracilaria verrucosa.
Ellas son:

Opephora marina

Rhabdonema arcuatum

Navicula tubulifera

Gomphonema pseudoexiguum
Grammatophora marina

Cocconeis scutellum

Cocconeis scutellum var. stauroneiformis

Otros 22 taxas de diatomeas son también característicos del pelillo,
pero no en un grado tan estricto como las anteriores, pues si bien se presen-
taron en muestras de la zona norte, zona central y zona sur, faltaron en
algunas de ellas y su abundancia relativa fue varible:

COCCONEES: INUMENSTS. eroriareciageno» FEED rara

COCCONESS DMITUPTAZ: aci baño engrase ces abundante
Cocconeis dirupta var. flexella: .................... rara

Cocconeis NOTtINA SP. MOV. coneccociccccicccnnncnnnnnss rara

Cocconeis placentula var. euglypta: ............ muy abundante, abundante
Cymbella ¡VERÍATCOSAS e hi at ts rara
Grammatophora angulosa: cococciiciciccionnnicoos escasa
Grammatophora OCBanica: omiccinionicnonininiónións muy abundante
Navicula ¡ODIETUADIES: sega ta satais er ocio itadas rara

Nantcula TIIALCIICA rl arias rara

Navicula forcipata var. densestriata: ............ rara
Navicula.stankovici var. chilensis var. nov.: rara
ERSICOSpREeTild CUÍPOLOS —ioscoapeqrincrccon parón rara

Synedra fasciculata var. truncata: moi... rara
CAOSEIROTISCUS EXNCESVÍTTCUS, | coc aianrcazacónr ricino rara

Achnanthes brevipes var. intermedia: ......... rara

Biddulphia aurita var. ODtUSa: ono escasa
Asa JOnRTÍCOÍA: >... ció cc cicoóoiciccrnioonano rss rara
ERCILLA DIGSEDOÍO: ¿ci ccticicccncccncarnacizanina ra rara
SITO POTAÍOZA:=".......io.comciccccconiccccara ciacarazóns rara
Lichmophora abbreviata: oi... de rara
Trachyneis aspera var. elliptica: ............. rara

Se desprende también, del análisis de la TABLA 1, que hay especies
que por su presencia, caracterizan ya sea a la zona norte, central o sur del
país, como también a determinados lugares.

ESPECIES PRESENTES EN LA ZONA NORTE (COQUIMBO).

Achnanthes exigua var. constricta; Achnanthes lanceolata var. dubia;
Amphora lineolata; Chaetoceros decipiens; Chaetoceros radicans; Opephora
lineata; Synedra ulna; Trachysphenia australis var. aucklandica; Surirella
ovalis var. salina; Pleurosigma nicobaricum; Navicula decussis; Diatoma
hyemale var. quadratum; Coscinodiscus granulosus var. granulosus.

ESPECIES PRESENTES EN LA ZONA NORTE (COQUIMBO) Y EN LA
ZONA CENTRAL (DICHATO Y/O CONCEPCION Y/O LENGA Y/O
TUBUL).

Cocconeis californica var. lengana; Skeletonema costatum; Stauroneis
lapponica; Diatoma elongatum var. tenue f. minus; Lichmophora flabellata;
Dimerogramma minor; Melosira granulata; Navicula spectabilis; Cyclotella
meneghiniana; Navicula gregaria.

ESPECIES PRESENTES EN LA ZONA NORTE (COQUIMBO) Y EN LA
ZONA SUR (QUENUIR Y/O PUDETO Y/O QUETALMAHUE).

Campylodiscus fastuosus; Coscinodiscus radiatus; Synedra fulgens var.
mediterranea; Nitzschia constricta f. parva; Cocconeis scutellum var. ornata;
Epithemia argus.

ESPECIES PRESENTES SOLAMENTE EN LA ZONA CENTRAL (DI-
CHATO Y/O CONCEPCION Y/O LENGA Y/O ISLA STA. MARIA
Y/O TUBUL.

Ceratoneiws arcus var. limearis; Ceratoneis arcus var. amphioxys;
Cocconeis costata var. hexagona; Cymbella tumida; Eunotia exigua var.
tridentula; Grammatophora arcuata, Hyalodiscus kerguelensis; Melosira ita-
lica; Melosira varians; Navicula dicephala var. elginensis; Navicula viridula
var. avenacea; Navicula pupula var. rectangularis; Synedra ulna var. 0xy-
rhynchus; Coscinodiscus perforatus var. cellulosa; Coscinodiscus janischi;
Achnanthes temperei, Biddulphia longicruris var. hyalinma; Frustulia vulgaris;
Gomphonema .montanum; Gomphonema constrictum; Stauroneis anceps;
Stauroneis dessiderata; Nitzschia parvula; Nitzschia apiculata; Nitzschia obtusa;
Nitschia acicularis; Pleurosigma intermedium; Epithema zebra; Pinnularia
viridis var. minor; Pinnularia baltica; Hantzschia amphioxys; Surirella ovata
var. smithit.

ESPECIES PRESENTES SOLAMENTE EN LA ZONA SUR (QUENUIR
Y/O PUDETO Y/O G. QUETALMAHUE).

Cocconeis pseudomarginata; Cocconeis formosa var. marina var. nov.;
Cymbella aequalis; Cymbella pusilla; Eunotia tenella; Melosira nummuloides;
Melosira sulcata; Navicula accomoda; Navicula exigua; Navicula libellus;
Achnanthes robusta sp. nov.; Biddulphia longicruris; Diploneis papula var.
constricta; Nitzschia acuminata var. densestriata var. nov.; Nitzschia sigma;
Pleurosigma naviculaceum; Clyclotella operculata; Pinnularta divergens; Am-
phora bongrainii; Amphora ostrearia; Caloneis oregonica; Gyrosigma tenui-
ssimum var. angustissima y Asterionella formosa var. gracillima,

Veamos ahora en detalle cada uno de los lugares muestreados.

ZONA "NOR TE

1.— BAHIA DE COQUIMBO.

Se determinó un total de 59 taxa de diatomeas correspondientes a 28
géneros. Los géneros con mayor número de especies y variedades fueron:
Cocconeis (9), Navicula (8) y Nitzschia (4); el resto tiene uno o dos taxa.

Según la abundancia con que se presentaron tememos cuatro grupos
de taxa.

20 =

a) Taxa “muy abundantes”: Rhabdonema arcuatum, Grammatophora ocea-
nica, Grammatophora marina, Cocconets californica var. lengana, Cocconeis
scutellum, Cocconeis scutellum var. stauroneiformis, Cocconeis placentula
var. euglypta y Gomphonema pseudoexiguum.

b) Taxa “abundantes”: Lichmophora abbreviata y Cocconeis dirupta.

c) Taxa “escasos”: Biddulphia aurita var. obtusa, Synedra fulgens var. me-
diterranea, Opephora marina, Navicula tubulifera y Grammatophora
angulosa.

d) Taxa “raros”: corresponde al resto de los taxa con una o dos células por
preparación (Pabla 1).

De los taxa presentes en la Bahía de Coquimbo, el 59.3% corresponde
a formas típicamente marinas, el 23.7% a formas de agua dulce, el 10.1%
a formas de aguas mixohalinas y un 6.79% a formas de ecología aún no bien
conocida. Por otra parte un 33,8%, de los taxa de este lugar son formas per-
lectamente conocidas como epífitas.

Las siguientes 13 taxa se presentaron exclusivamente en la Bahía de
Coquimbo, aunque su abundancia relativa fue “rara”:

Achnanthes exigua var. tridentula; Achnanthes lanceolata var. dubia;
Amphora lineolata; Chaetoceros decipiens; Chaetoceros radicans, Opephora
lineata; Synedra ulna; Trachysphenia australis var. aucklandica; Surirella
ovalis var. salina; Pleurosigma nicobaricum; Navicula decussis, Diatoma hye-
male var. quadratum y Coscinodiscus granulosus var. granulosus.

ZONA CENTRAL

1) BAHIA DE DICHATO.

Fueron determinados 44 taxa correspondientes a 24 géneros, de los
cuales Cocconets (7), Navicula (6) y Grammatophora (4) presentaron el mayor
número de especies y variedades.

Según la abundancia relativa tenemos:

a) Taxa “muy abundantes”: Gomphonema pseudoexiguum; Synedra fascicu-
lata; Rhabdonema arcuatum; Grammatophora arcuata; Grammatophora
oceanica; Grammatophora marina; Cocconeis placentula var. euglypta;
Cocconeis californica var. lengana y Cocconeis scutellum.

b) Taxa “abundantes”: Lichmophora abbreviata; Melosira juerguensii;
Cocconeis dirupta y Cocconeis costata.

He

c) Taxa “escasos”: Biddulphia aurita var. obtusa; Opephora marina; Navicula
tubulifera; Hyalodiscus kerguelensis; Entopyla australis; Grammatophora
angulosa y Synedra fasciculata.

El 62.2% de los taxa encontrados en este lugar son marinos, el 20%
son de agua dulce, el 11.1% son de aguas mixohalinas y el 6.6% de los taxa
son de ecología no conocida. El 42.2% de los taxa son conocidos como
epífitos.

Los siguientes 4 taxa se presentaron exclusivamente en la Bahía de
Dichato: Navicula pupula var. rectangularis; Gomphonema constrictum;
Cymbella tumida y Eunotia exigua var. tridentula. Para todos ellos su abun-
dancia relativa fue calificada de “rara”.

2) BAHIA DE CONCEPCION.

Para este lugar fueron determinados 32 taxa correspondientes a 21
géneros, donde Cocconeis (5) y Navicula (4) presentaron el mayor número
de especies.

a) Taxa “muy abundantes”: Gomphonema pseudoexiguum; Rhabdonema
arcuatum; Grammatophora marina; Cocconeis scutellum; Cocconeis scute-
llum var. stauroneiformis; Cocconeis californica var. lengana y Cocconeis
placentula var. euglypta.

b) Taxa “abundante”: Cocconeis costata y Lichmophora abbreviata.

c) Taxa “escasos”: Biddulphia aurita var. obtusa; Opephora marina; Navicula
tubulifera; Entopyla australis y Hyalodiscus kerguelensis.

El 62.5%, corresponde a taxa marinos, el 21.8%, a taxa de agua dulce,
el 9.3% a taxa de aguas salobres y el 6.2% son taxa de ecología no bien
conocida. El 34.3% son taxa epífitos bien conocidos.

Los siguientes taxa se presentaron exclusivamente en la Bahía de
Concepción: Coscinodiscus janischiiz; Melosira varians; Biddulphia longicruris
var. hyalina y Epithemia zebra.

Todos con abundancia relativa “rara”.

3) ESTERO LENGA.

Se determinó un total de 54 taxa agrupados en 27 géneros, donde
Cocconeis (9), Navicula (7) y Grammatophora (4) reunieron el mayor número
- de especies y variedades.

1 JE

a) Taxa “muy abundantes”: Grammatophora marina; Grammatophora ocea-
nica; Grammatophora arcuata; Cocconeis scutellum; Cocconeis scutellum
var. stauroneiformis; Cocconeis californica var. lengana; Gomphonema
pseudoexiguum; Synedra fasciculata y Rhabdonema arcuatum.

b) Taxa “escasos”: Opephora marina; Hyalodiscus kerguelensis; Grammalto-
phora angulosa; Entopyla australis y Navicula tubulfera.

El 67.29, corresponde a taxa de aguas dulces, el 7.2% a taxa de aguas
mixohalinas y el 7.2% son de ecología aún no bien conocida. De los taxa
determinados el 32.79, son perfectamente conocidos como epífitos.

Los siguientes 7 taxa se presentaron solamente en el Estero Lenga,
con abundancia relativa de “rara”: Gomphonema parvulum, Achnanthes tem-
perei, Stauroneis dessiderata, Pleurosigma intermedium, Pinnularia baltica,
Hantzschia amphioxys y Coscinodiscus perforatus var. cellulosa.

4) RIO TUBUL.

Cincuenta y un taxa fueron determinados sobre pelillo recolectado en
este lugar, los que se agrupan en 28 géneros.

Los géneros más ricos en especies y variedades fueron Navicula (7),
Cocconeis (6) y Nitzschia (4).

a) Taxa “muy abundantes”; Gomphonema pseudoexiguum, Synedra fascicu-
lata, Rhabdonema arcuatum, Grammatophora marina, Grammatophora
oceanica, Cocconeis californica var. lengana, Cocconeis placentula var.
euglypta y Cocconeis scutellum var. stauroneiformis.

b) Taxa “abundantes”: Lichmophora abbreviata y Cocconeis costata.

c) Taxa “escasos”: Opephora marina, Navicula tubulifera, Hyalodiscus sco-
ticus, Grammatophora angulosa y Entopyla australis.

El 58.8% de los taxa son marinos, el 33.39, son de agua dulce y el 7.8%
son taxa de ecología no bien conocida. El 43.19%, corresponde a taxa perfecta-
mente conocidos como epífitos.

Los siguientes 5 taxa se encontraron solamente en muestras procedentes
del Río Tubul, con abundancia relativa de “rara”: Nitzschia obtusa, Nitzschia

apiculata, Navicula dicephala var. elginensis, Frustulia vulgaris y Melosira
itálica.

5) ISLA SANTA MARIA.
Se determinó 43 taxa de diatomeas correspondientes a 21 géneros, donde

Cocconeis (8), Navicula (6) y Grammatophora (4) agrupan el mayor número
de especies y variedades.

a

a) Taxa “muy abundantes”: Gomphonema pseudoexiguum, Synedra fascicu-
lata, Rhabdonema arcuatum, Grammatophora arcuata, Grammatophora
marina, Cocconeis placentula var. euglypta, Cocconeis californica var.
lengana, Cocconeis scutellum y Cocconeis scutellum var. stauroneiformis.

b) Taxa “abundantes”: Cocconeis costata.

c) Taxa “escasos”: Opephora marina, Navicula tubulifera, Grammatophora
angulosa y Entopyla australis.

El 48.8%, de los taxa determinados son marinos, el 32.5% son de agua
dulce, el 11.6% son de aguas mixohalinas y el 6.9%, son taxa de ecología
no conocida.

Cinco taxa fueron encontrados solamente en las muestras de Gracilaria
de este lugar, su abundancia relativa fue “rara”: Pinnularia viridis var. minor,
Nitzschia acicularis, Navicula viridula var. avenacea, Cocconetis costata var.
hexagona y Ceratoneis arcus var. amphioxys.

ZONA, SUR

1) RIO QUENUIR.

Treinta taxa de diatomeas fueron determinados en muestras procedentes
de este río, agrupados en 18 géneros, siendo Cocconeis (4), Navicula (4) y
Grammatophora (3) los que presentaron el mayor número de especies.

a) Taxa “muy abundantes”: Gomphonema pseudoexiguum, Synedra fascicu-
lata, Rhabdonema arcuatum, Grammatophora oceanica, Grammatophora
marina, Cocconets placentula var. euglypta, Cocconeis scutellum y Cocconeis
scutellum var. stauroneiformis.

b) Taxa “abundantes”: Lichmophora abbreviata.

c) Taxa “escasos”: Opephora marina, Navicula tubulifera, Grammatophora
angulosa, Entopyla australis y Cocconeis formosa var. marina,

El 51.69, de los taxa determinados son marinos, el 12.9% son de agua
dulce, el 22.5%, son de aguas mixohalinas y el 12.9% son de ecología aún no
conocida. El 48.3% son taxa perfectamente conocidos como epífitos.

Cuatro taxa se presentaron solamente en este lugar, con abundancia
relativa de “rara”: Achnanthes robusta sp. nov., Cymbella pusilla, Asterionella
formosa var. gracillima y Cyclotella operculata.

E

2) RIO PUDETO.

Se determinó un total de 47 taxa agrupados en 23 géneros, donde
Navicula (9) y Cocconeis (7) presentaron el mayor número de especies y
variedades.

a) Taxa “muy abundantes”: Grammatophora marina, Gomphonema pseudo-
exiguum, Rhabdonema arcuatum, Synedra fasciculata, Cocconeis scutellum,
Cocconeis scutellum var. stauroneiformis y Cocconeis placentula var.
euglypta.

b) Taxa “abundantes”: Melosira juergensii.

c) Taxa “escasos”: Biddulphia aurita var. obtusa, Opephora marina, Navicula
tubulifera, Hyalodiscus scoticus, Grammatophora angulosa, Entopyla
australis y Cocconeis formosa var. marina var. nov.

El 63.8%, son taxa marinos, el 19.19% son taxa de agua dulce, el 8.5%
son de taxa de aguas mixohalinas y el 8.5% son de ecología no bien conocida.
El 40.49%, son taxa bien conocidos como epífitos.

Las siguientes taxa se presentaron exclusivamente en este lugar, con
abundancia relativa de “rara”: Eunotia tenella, Nitzschia acuminata var.
densestriata var. nov. y Pinnularia divergens.

3) GOLFO DE QUETALMAHUE.

El mayor número de taxa de diatomeas fueron determinados en este
lugar, 66, agrupados en 28 géneros. Tal como en los otros lugares muestreados,
los géneros Cocconeis (10), Navicula (9) y Nitzschia (7) reunieron el mayor
número de especies y variedades.

a) Taxa “muy abundantes”: Gomphonema pseudoexiguum, Synedra fascicu-
lata, Rhabdonema arcuatum, Grammatophora marina, Grammatophora
oceanica, Cocconeis placentula var. euglypta, Cocconeis scutellum y

Cocconeis scutellum var. stauroneiformas.

b) Taxa “abundantes”: Melosira juergensii, Lichmophora abbreviata, Cocco-
neis dirupta y Cocconeis costata.

c) Taxa “escasos”: Biddulphia aurita var. obtusa, Synedra fulgens var. medi-
terranea, Opephora marina, Grammatophora angulosa, Entopyla aus-
tralis, Cocconeis pseudomarginata y Cocconeis formosa var. marina var.
nov.

El 74.29, son taxa marinos, el 10.6%, son taxa de agua dulce, el 6%
son taxa de aguas mixohalinas y el 9%, son de ecología no bien conocida. El
40.9%, son taxa bien conocidos como epífitos.

27 2

Los siguientes 13 taxa se presentaron solamente en las muestras de
Gracilaria del Golfo de Quetalmahue con abundancia relativa de “rara” a
excepción de Cocconeis pseudomarginata que fue “escasa”: Gyrosygma te-
nuissimum var. angustissimum, Nitzschia sigma, Navicula libellus, Navicula
exigua, Diploneis papula var. constricta, Cymbella aequalis, Cocconeis pseudo-
marginata, Amphora ostrearia, Amphora bongrainii, Biddulphia longicruris,
Pleurosigma naviculaceum, Melosira sulcata y Caloneis oregónica.

Del análisis de la flora diatomólogica epifita de Gracilaria verrucosa,
se observa que los géneros que agrupan el mayor número de taxa para cada
lugar estudiado son principalmente: Cocconeis y Navicula, y luego Nitzschia
y Grammatophora en menor grado.

Si bien es cierto que existen taxa que se presentan exclusivamente en
determinados lugares, no pueden considerarse como tipificadores o indica-
dores de dicho lugar debido a que su abundancia es mínima, encontrándose
solamente una o dos células en cada preparación.

ANÑNALESIS: DE + DOS. TAZXA

ORDEN DISCALES

Familia COSCINODISCACEAE

Melosira granulata (Ehr.) Ralfs var. granulata
Lám. 1, Fig. 1

RALFS in PRITCHARD, Infus., p. 820 (1861). VAN HEURCK, H., Traité,
p. 444, Lám. 19, Fig. 621 (1899). TSUMURA, K., Jour. Yokohama Munic.
Univ., Ser. C-14,, 47: 2, Lám. 1, Fig. 1 (1956).

Largo de las células 30-34u; ancho 11-16 ¡; estrías longitudinales 8-9
en 10 y.

Especie de aguas dulces y mixohalinas, encontrada en Bromeliaceae
(TAVARES, 1971). Los raros ejemplares determinados provienen de la Bahía
de Coquimbo y del Río Tubul.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

==

Melosira italica (Ehr.) Kútz. var. italica

KÚTZING, F. T., Bacill., p. 421, Lám. 1, Fig. 12 (1844). TSUMURA, K.,
Jour. Yokohama Munic. Univ., Ser. C-14, 47:2, Lám. 1, Fig. 2 (1956).
Largo de la célula 8.5 yu; ancho 4 yo estrías 20 en 10 y.

Especie de aguas dulces; un sólo fústulo observado en muestra re-
colectada en el Río Tubul.
Distribución conocida para Chile: Vea Rivera (1970).

Melosira juergensii Agardh var. juergensti
Lám. 1, Fig. 2
AGARDH, C. A., Syst. Alg., p. 9 (1824). HENDEY, N. I., Fish. Invest., 5(4):
72, Lám. 1, Fig. 3 (1964).

Diámetro valvar 8.5-13 ¡; eje pervalvar 18-22 ¡.

Especie marina litoral. “Abundante” en muestras recolectadas en la
zona central y sur del país: Bahía de Dichato, Estero Lenga, Río Pudeto y
Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Melosira nummuloides (Dillw.) Ag. var. nummuloides
Lám. 1, Fig. 3

AGARDH, C. A,, Syst. Alg., p. 8 (1824). HENDEY, N. I,, Fish. Inv., 4(5):72,
Lám. 1, Fig. 1 (1964).

Diámetro valvar 16-20 ¡; largo de cada semiteca 8-10 y.

Especie marina y de aguas mixohalinas, epífita. Determinada sólo en
muestras de la zona sur, siempre en escaso número: Río Pudeto y Golfo de
Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Lavado de algas pardas entre Ra-
muncho y Talcahuano; Isla Llancahue, Lago Risopatrón, (Krasske, 1939);
Calbuco (Krasske, 1939 y 1941); Bahía de Dichato, Puyuhuapi (Krasske, 1941).

Melosira sulcata (Ehr.) Kútz. var. sulcata
Lám. 1, Fig. 4

KUTZING, F. T., Bacill., p. 55, Lám. 2, Fig. 7 (1844). HEURCK, H. V.,
Traité, p. 444, Lám. 19, Fig. 624 (1889). CUPP, E. E., Bull. Scripps. Inst.
Oceanogr., 5(1):40, Fig. 2 (1943).

Mp

Diámetro valvar 18-21 y; eje pervalvar 6-8 y.

Especie marina y de aguas mixohalinas, bentónica, a veces planctónica,
encontrada como epífita por Frenguelli. Tres o cuatro frústulos observados
en muestra del Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Mejillones (Múller, 1891);
Trípolis de Tiltil y Mejillones (Frenguelli, 1949); Río Cullen (Cleve, 1900);
Lavado de algas pardas recolectadas entre Ramuncho y Talcahuano, Calbuco
(Krasske, 1939); Bahía de Dichato, Bahía de Valparaíso, Puyuhuapi; Golfo de
Dalcahue (Krasske, 1941).

Melosira varians Agardh var. varians
Lám. 1, Fig. 4B

AGARDH, C. A., Consp. Crit. Diat., p. 64 (1832). TSUMURA, K., Jour. Yoko-
hama Munic. Univ., Ser. C-12, 43:11, Lám. 1, Fig. 1 (1955).
Diámetro de la valva 16-25 y.

Especie de aguas dulces y salobres, bentónica, a veces accidentalmente
en el plancton.

Las pocas células observadas provienen de la Bahía de Concepción.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Hyalodiscus kerguelensis Karsten var. kerguelensis

KARSTEN, G., “Valdivia” Antarkt. Exped., 2(2): 74, Lám. 2, Figs. 6-7 (1905).
HENDEY, N. 1., Discovery Rep., 16:325 (1937).

Diámetro valvar 74-107 yu; diámetro del umbilico 21-55 yu; líneas 28-29
en 10 y.

Especie marina; encontrada con abundancia relativa de “escasa” en
muestras de la zona central: Bahía de Dichato, Bahía de Concepción y Estero
Lenga.

Distribución conocida para Chile: señalada solamente para el Estero
Lenga (Rivera, Parra y González, 1973).

Hyalodiscus scoticus (Kútz.) Grun. var. scoticus
Lám. 12; “Figs. 131, 132

GRUNOW, A., Casp. Sea, p. 690, Lám. 21, Fig. 5 (1879). HENDEY, N. L,
Fish. Inv., 4(5):90 (1964).

BR

Diámetro valvar 21-25 yu; diámetro del umbilico 10-16 ,.

Especie marina y de aguas mixohalinas, epífita, cosmopolita. “Escasa”
en muestras recolectadas en la zona central y sur: Río Tubul, Río Pudeto y
Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange (Petit, 1889); Río
Cullen (Cleve, 1900); Calbuco, Puyuhuapi (Krasske, 1939 y 1941).

Skeletonema costatum (Grev.) Cleve var. costatum

CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., 5(8):18 (1878) HENDEY, N. L, Dis-
covery Rep., 16:236 (1937). CUPP, E. E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr., 5(1):43,
Fig. 6 (1943).

Diámetro de las células 3-10 y.

Especie marina, nerítica, cosmopolita, generalmente presente en gran
número en el plancton. Fue observada en muestras de la zona norte y central,
siempre en poca cantidad: Bahía de Coquimbo, Bahía de Concepción y Río
Tubul.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González (1973).

Coscinodiscus curvatulus Grunow var. curvatulus
Lám. 12, Fig. 133

GRUNOW, A. in A. SCHMIDT, Atlas, Lám. 57, Fig. 33 (1878). LEBOUR,
M. V., Roy. Soc. Publ., 116:46, Fig. 23 (1930). HENDEY, N. I, Discovery
Rep., 16:251 (1937). CUPP, E. E., Bull. Scripps Inst., Oceanogr., 5(1):55, Fig. 17;
Lám. 1, Fig. 2 (1943). HENDEY, N. 1, Fish. Inv., 4(5):81 (1964).

Diámetro valvar 43-59 ¡; aréolas 8 en 10 ¡; estrías marginales 23 en 10 y.

Especie marina, nerítica cosmopolita. Presente en forma muy escasa en
muestras de la zona central y sur: Isla Santa María, Río Pudeto, Golfo de
Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Coscinodiscus excentricus Ehrenberg var. excentricus
Lám. 1, Fig. 5

EHRENBERG, C. G., Abh. Akad. Berlin Physik, p. 146 (1839). VAN HEURCK,
H., Traité, p. 531, Lám. 23, Fig. 666 (1899). HENDEY, N. I., Discovery Rep.,
16:242 (1937). CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., IV. 2(1):71, Fig. 118a
(1951). HENDEY, N. 1, Fish. Inv., 4(5):80, Lám. 24, Fig. 7 (1964).

un,

Diámetro valvar 18-38 yu; aréolas: 7-9 en 10 y al centro, 9-11 en 10 y
hacia el margen y 10-13 cerca de él.

Especie marina, planctónica, cosmopolita. En nuestro material fue en-
contrada en la zona norte, central y sur, siempre en escasa cantidad: Bahía
de Coquimbo, Bahía de Dichato. Estero Lenga, Isla Sta. María, Río Tubul,
Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Coscinodiscus granulosus Grunow var. granulosus
Lám. 12, “Figs: “13401951 136,137

GRUNOW in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl., 17(2):113, Lám. 7,
Fig. 130 (1880). DE TONI, G., Syllogue Alg., 2:1203 (1891).

Valvas circulares, 19-25 y de diámetro, con punteaduras radiales dis-
puestas desordenadamente, todas de igual tamaño, o mayores hacia el borde.
Anillo submarginal de notorias espinas presentes sobre las valvas, 3 en 10 y,
a veces no se observan las espinas, pero sí un anillo de fuertes puntos, 3 en
10 u. Anillo marginal estriado, 1-2 y de ancho, estrías 17-18 en 10 y.

En el dibujo original de Grunow se observa que las punteaduras de
la valva son mayores al centro que hacia los bordes, y lo mismo señala
DE TONI (loc. cit.) y CLEVE-EULER, p. 70 (1951). En nuestros ejemplares
estas punteaduras fueron todas de igual tamaño o mayores hacia el borde
valvar. La presencia del anillo submarginal de espinas o puntos es también
discutida. Grunow dice que se trata de notorios puntos y coloca en paréntesis
(espinas), sin indicar si éstas son largas o cortas. Cleve-Euler dice que son
puntos y también coloca en paréntesis (espinitas?”). En nuestro material se
vio claramente que en algunos casos se trata de largas espinas (Lám. 12,
Figs. 134-135) o en ausencia de ellos el anillo submarginal está formado de
notorios puntos (Lám. 12, Figs. 136-137).

El número de estrías marginales de nuestros ejemplares es exacto al
señalado por Grunow (17-18 en 10 y).

Las escasas células observadas proceden de material recolectado en la
Bahía de Coquimbo. No había sido señalada anteriormente para Chile.

Coscinodiscus janischii A. Sch. var. janischit
Lám. 1, Figs: 6, 7, 8; Lám: 12, Fig. 138

SCHMITH, A., Atlas, Lám. 64, Fig. 34 (1878). BOYER, C. S., Proc. Acad. Nat.
Sci. Phila., 78:56 (1927). RIVERA, P., Gayana, Bot., 18:28, Lám. 17, Fig. 3
(1969).

-20-

Diámetro valvar 120 y; aréolas 3.5 en 10 y. al centro, 3 hacia el margen
y 4 cerca de él.

Especie marina, planctónica, oceánica y nerítica, cosmopolita. Se en-
contró una sola célula en material recolectado en la Bahía de Concepción.

Distribución conocida para Chile: ha sido señalada desde Arica a
Puerto Montt.

Coscinodiscus perforatus Ehr. var. cellulosa Grunow
Lám. 2, Fig. 9

GRUNOW, A., Denkschr, Akad. Wien Math. Naturw., 48:75 (1884). CUPP,
E. E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr., 5(1):61, Fig. 25 A; Lám. 3, Fig. 1 (1943).
CLEVE-EULER, A., Sv. Vet. Akad. Handl., IV. 2(1):66, Fig. 100c (1951).

Diámetro valvar 132 ¡; aréolas 4 en 10 p al centro, 3.5-4 hacia el
margen y 4.5 cerca de él, Estrías marginales 7-8 en 10 y.

Variedad marina, planctónica. Una sola célula encontrada en material
proveniente del Estero Lenga.

Distribución conocida para Chile: señalada solamente para la Bahía
de Concepción (Rivera, 1969).

Coscinodiscus radiatus Ehrenberg var. radiatus
Lám. 2, Fig. 10

EHRENBERG, C. G., Abh. Akad. Berlin Physik, 1839, p. 148, Lám. 3, Fig. la-c
(1841). CUPP, E. E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr., 5(1):56, Fig. 20, Lám. 1,
Fig. 4 (1943). BRUNEL, J., Contr. Minist. Chasse et Pech,, Quebec, 91:55,
Lám. 3, Fig. 1 (1962). HENDEY, N. 1., Fish. Inv., 4(5): 76, Lám. 22, Fig. 7
(1964).

Diámetro valvar 39-50 ys aréolas: 4-5 en 10 po» al centro, 6-8 hacia el
margen y 11-12 cerca de él. Estrías marginales en número de 11-12 en 10 y.

Especie marina, en el plancton nerítico y pelágico, cosmopolita.
Encontrado siempre en escaso número en muestras de la Bahía de Coquimbo
y en el Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: se la ha señalado desde Arica a
Cabo de Hornos.

EA

Coscinodiscus subtilis Ehr. var. subtilis
Lám. 12, Figs. 139, 140

EHRENBERG, C. G., Abh. Akad. Wiss. Berlin, p. 412, Lám. 1, Fig. 3; 18,
1841(1843). VANLANDINGHAM, S., Beih. Nova Hedw., 26:16, Lám. 5,
Figs. 2-3, 7-8, 10-12; Lám. 6; Lám. 7; Lám. 8, Figs. 2-6; Lám. 9, Figs. 3-5;
Lám. 10, Figs. 1-2, 4 (1967).

Diámetro valvar 31-37 ¡; aréolas 10-11 en 10 y al centro, 9-11 hacia
el margen y 10-12 cerca de él. Estrías marginales 21-23 en 10 p.

Especie marina, planctónica, cosmopolita. Muy rara en el material estu-
diado, solo presente en muestras del Río Tubul y Río Pudeto.

Distribución conocida para Chile: Tripoli de Mejillones (Ehrenberg,
1856; Moller, 1891, Tempere £ Peragallo, 1907). Trípolis de Tiltil y Meji-
llones (Frenguelli, 1949); Bahía Orange (Petit, 1889); Paso de Drake (Fren-
guelli £ Orlando, 1958), todos como Coscinodiscus excentricus var. fasciculatus.

Cyclotella meneghiniana Kútzing var. meneghiniana
Lám. 2, Fig. 11

KUTZING, F. T., Bacill., p. 50, Lám. 30, Fig. 68 (1844). VAN HEURCK, H.,
Traité, p. 447, Lám. 22, Fig. 656 (1899) FRENGUELLI, J., Bol. Acad. Nac.
Ciencias, 18:103, Lám. 9, Figs. 19-20 (1923). HUBER-PESTALOZZI, G., Die
Binnengewasser, 16(2):395, Fig. 479 (1942). TSUMURA, K., Your. Yokohama
Munic. Univ., Ser. C-14, 47:2, Lám. 1, Fig. 6 (1956).

Diámetro valvar 10-13 y; costillas 8-9 en 10 y.

Especie de aguas dulces y salobres, cosmopolita. Las tres o cuatro cé-
lulas encontradas provienen de la Bahía de Coquimbo (Zona norte) y de la
Isla Sta. María (Zona central).

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Cyclotella operculata (Agarth) Kitzing var. operculata
Lám. 13, Fig. 141

KUTZING, F. t., Linnea, 8:535, fig. 1 (1833), DE TONI, G., Syllogue Alg.,
2:1354 (1891) HUBER-PESTALOZZI, G., Die Binnengewasser, 16(2):398,
. Fig. 488 (1942). CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., IV. 2(1):47 (1951).
Diámetro valvar 16 ¡; estrías 14 en 10 p.

En,

Especie de aguas dulces; encontrada en una muestra recolectada en
el Río Quenuir. Muy rara.
Distribución conocida para Chile: Lago Ranco, Lago Laja (Rivera,

1970).

Familia ACTINODISCACEAE

Actinoptychus undulatus (Bailey) Ralfs var. undulatus
Lám. 13, Fig. 142

RALFS in PRITCHARD, A,, Infus., p. 839, Lám. 5, Fig. 88 (1861). VAN
HEURCK, H., Traité, p. 496, Lám. 22, Fig. 648 (1899). PERAGALLO et
PERAGALLO, Diat. Mar. France, p. 407, Lám. 111, Fig. 1 (1897-1908).
HENDEY, N. 1,, Discovery Rep., 16:271 (1937).

Diámetro valvar 30-41 ¡.

Especie marina bentónica, accidentalmente planctónica, a veces encon-
trata como epífita de algas superiores.

Las escasas células encontradas correspondieron a muestras recolectadas
en la zona central y sur del país: Bahía de Dichato, Estero Lenga, Isla
Sta. María, Río Tubul y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Familia EUPODISCACEAE

Auliscus sculptus (Wm. Smith) Ralfs var sculptus
Lám. 2, Fig. 12

RALFS in A. PRITCHAR)D, Infus., p. 845, Lám. 6, Fig. 3 (1861). SCHMIDT,
A., et al., Atlas, Lám. 32, Figs. 21-22 (1900-1901). VAN HEURCK, H., Traité,
p. 482, Lám. 21, Fig. 646; Fig. 215, texto (1899). CLEVE-EULER, A., Sv.
Vet-Akad. Handl., IV. 2(1):83, Fig. 150 (1951). HENDEY, N. L, Fish. Inv.,
4(5):98, Lám. 23, Fig. 4 (1964).

Diámetro mayor 39-43 ¡.

Especie de aguas marinas, corrientemente encontrada en estuarios. Las
pocas células encontradas provienen de muestras recolectadas en la zona central
(Estero Lenga) y en la zona sur (Golfo de Quetalmahue).

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

a,

ORDEN BIDDULPHIALES
Familia CHAETOCERACEAE

Chaetoceros decipiens Cleve var. decipiens
Lám. 3, Fig. 21

CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., 1(13):11, Lám. 1, Fig. 5 (1873). HENDEY,

N. IL, Discovery Rep., 16:298 (1937). BRUNEL, J., Contr. Minist. Chase et

Pech., Quebec, 91:99, Lám. 21-22 (1962). |
Células de 20-45 ¡, de ancho.

Especie marina, oceánica, cosmopolita. Muy pocas células encontradas
en el material estudiado, todas recolectadas en la Bahía de Coquimbo.
Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Chaetoceros radicans Schútt var. radicans
Lám. 2, Fig. 13

SCHÚTT, F., Ber. Deutsch. Bot. Ges. Wien, 13:48, Fig. 27 (1895). HENDEY,
N. L, Fish. Inv., 4(5):134, Lám. 14, Fig. 4 (1964).

Células de 6-16 ¡y de ancho.

Especie marina, nerítica, abundante en aguas templadas. Encontrada
exclusivamente en la Bahía de Coquimbo y en muy baja cantidad.

4

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Familia BIDDULPHIACEAE

Biddulphia aurita (Lyngbye) Brébisson et Godey var. aurita
Lám. 2, Fig. 14

BREBISSON et GODEY, Consid. sur les Diat., p. 12 (1838), PERAGALLO
et PERAGALLO, Diat. Mar. France, p. 381, lám. 98, Figs. 3, 5 y 6 (1897-1908).
CUP, E. E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr., 5(1):161, Fig. 112A, 1-3 (1943),
CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., IV. 2(1):119, Fig. 257 a-e (1951).
HENDEY, N. L, Fish. Inv., 4(5):103, Lám. 24, Fig. 6 (1964).
Especie marina, planctónica pero también encontrada como epífita.
Determinada en muestras recolectadas en la zona central y sur, siempre
en escasa cantidad: Bahía de Dichato, Río Tubul y Golfo de Quetalmahue.
Distribución conocida para Chile: ha sido señalada desde Valparaíso
a Cabo de Hornos.

ES

Biddulphia aurita var. obtusa (Kiútzing) Hustedt
Lám. 3, Fig. 15

HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora 7(1):848, Fig. 502 (1930). HENDEY,
N. 1, Discovery Rep., 16:275 (1937). BRUNEL, J., Contr. Minist. Chasse et
Pech., Québec, 91:145 (1962).

Eje pervalvar 24-70 y; ancho 17-41 y.

Variedad marina, epífita facultativa, generalmente presente con una
abundancia relativa de “escasa”, en las zonas norte, central y sur: Bahía de
Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Concepción, Río Pudeto y Golfo
de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Biddulphia longicruris Grev. var. longicruris
Lám. 3, Fig. 17

GREVILLE, R. K., Quart. Your. Micr. Sci., 7:163, Lám. 8, Fig. 10 (1859).
CUPP, E. E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr., 5(1):154, Fig. 111A, 1-3 (1943).
Eje apical 30-75 y.

Especie marina, planctónica, nerítica. Muy pocas células se encontraron
en nuestro material, todas provenientes del Golfo de Quetalmahue (zona sur).
Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Biddulphia longicruris var. hyalina (Schr.) Cupp
Lám. 3, Fig. 16

CUPP, E. E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr., 5(1):157,,, Fig.» 111B, 13 (1943).
AVARIA, S., Rev. Biol. Mar., 12 (1, 2 y 3):98, Lám. 7, Fig. 2 (1965), RIVERA,
P., Gayana, Bot., 18:47, Lám. 10, Figs. 1-2; Lám. 19, Fig. 1 (1969).

Eje apical 35-60 y.

Variedad marina, nerítica, especialmente abundante en aguas templadas.
En nuestro material se presentó tan escasa como la variedad tipo, pero sola-
mente en muestras de la Bahía de Concepción (zona central).

Distribución conocida para Chile: ha sido señalada desde Coquimbo
a Puerto Montt.

q

ORDEN ARAPHIDALES

Familia FRAGILARIACEAE

Grammatophora angulosa Ehr. var. angulosa
Lám. 3, Figs. 18, 19, 20

EHRENBERG, C. G., Abh. Akad. Berlin Physik., 1839, p. 154 (1841).
HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):39, Fig. 564 (1931).
Largo 16-50 y; ancho 11-16 y; estrías 12-15 en 10 y.

Especie marina, epifita, a veces planctónica. Presente en las muestras
de pelillo recolectado en las zonas central, norte y sur, faltando sólo en la
Bahía de Concepción: Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Estero Lenga,
Isla Santa María, Río Tubul, Río Quenuir, Río Pudeto y Golfo de Quetal-
mahue. En algunas de estas muestras alcanzó valores de abundancia relativa
de “escasa”.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Grammatophora arcuata Ehr. var. arcuata
Lám. 4, Fig. 22

EHRENBERG, C. G., Mikrogeol., Lám. 35 A, Fig. 23 (11-12) (1854). HUS-
TEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):42, Fig. 567 (1931).

Valvas arqueadas con extremos agudo-redondeados, septos bastante
ondulados. Estrías notorias 13-14 en 10 po fuertemente punteadas. Eje apical
29-36 yu; transapical 5-6 po

Especie marina, especialmente abundante en los mares árticos y antár-
ticos. En el material estudiado se la encontró generalmente en gran cantidad,
alcanzando valores de abundancia relativa de “escasa”, “abundante” y “muy
abundante”. Fue determinada solamente en muestras recolectadas en la zona
central: Bahía de Dichato, Estero Lenga e Isla Santa María.

Distribución conocida para Chile: solamente se la ha señalado para la
Bahía Orange, en Cabo de Hornos (Petit, 1889).

Grammatophora marina (Lyngbye) Kútz. var. marina
Lám. 4, Fig. 23; Lám. 13, Figs. 143, 144

KUTZING, F. T., Bacill., p. 128, Lám. 17, Fig. 24; Lám. 18, Fig. I, 1-5 (1844).
—HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):43, Fig. 569 (1931).
Largo 24-47 y; ancho 12-18 ¡,; estrías 20-21 en 10 y.

A

Especie marina, epífita, a veces planctónica. Es otro de los taxa más
característicos de la flora epífita del pelillo, generalmente presente en la
gran cantidad (“muy abundante”) y en todas las muestras estudiadas: Bahía
de Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Concepción, Estero Lenga, Isla
Santa María, Río Tubul, Río Quenuir, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973,

Grammatophora oceanica (Ehr.) Grun. var. oceanica
Lám. 13, Figs. 145, 146

GRUNOW, A., Beih. Bot. Zentralbl., 7:9 (1881), HUSTEDT, F., Rabenhorsts
Krypt. Flora, 7(2):45, Fig. 573 (1931).
Largo 22-75 y; ancho 8-17 ¡; estrías 21-24 en 10 y.

Especie marina, epífita, a veces planctónica. Presente en gran cantidad
en muestras de la zona norte, central y sur del país: Bahía de Coquimbo,
Bahía de Dichato, Estero Lenga, Isla Santa María, Río Tubul, Río Quenuir
y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Mejillones (Ehrenberg,
1856); Trípoli de Tiltil y Mejillones (Frenguelli, 1949); Bahía Orange (Petit,
1889); Calbuco, Cerca de Puyuhuapi, Isla Llancahue, Ramuncho, Lavado
de algas pardas recolectadas entre Ramuncho y Talcahuano (Krasske, 1939);
Bahía de Dichato, Bahía de San Vicente, Golfo de Dalcahue (Krasske, 1941).

Rhabdonema arcuatum (Lyngbye) Kútz. var. arcuatum
Lám. 13, Figs. 147, 148

KÚTZING, F. T., Bacill., p. 126, Lám. 18, Fig. 6 (1844). HUSTEDT, F.,
Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):20, Fig. 549a-b, £g (1931).

Eje apical 51-93 y; transapical 19-20; costillas transversales 6-7 en 10 y.

Especie marina, epífita; muy abundante en las muestras estudiadas,
presentes en todas ellas, uno de los taxa más característicos del pelillo. Encon-
trada en: Bahía de Coquimbo, Bahía de Concepción, Estero Lenga, Isla Santa
María, Río Tubul, Río Quenuir, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Lichmophora abbreviata Ag. var. abbreviata
Lám. 4, Figs. 24, 25

AGARDH, C. A., Consp. Crit. Diat., p. 42 (1831). HUSTEDT, F., Rabenhorsts
Krypt. Flora, 7(2):66, Fig. 590 (1931). CUPP, E. E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr.,
5(1):177, Fig. 127 (1943).

or

La mayoría de los autores han representado este taxon, en vista
valvar, con las estrías más o menos paralelas en toda la valva, a excepción
de Cupp (loc. cit.) cuya ilustración muestra una valva con las estrías para-
lelas en la parte inferior y convergentes en la parte superior. Este es el caso
de la mayoría de los frústulos observados por nosotros, notándose una va-
riación de la orientación de las estrías en la parte superior de la valva
que va desde fuertemente convergente a suavemente convergente; en la
parte inferior fueron siempre paralelas y más mumerosas en la parte superior
13-14 en 10 y.

Especie marina, epífita, a veces planctónica; en el material estudiado
a veces se la encontró “abundante” en muestras recolectadas en la zona
norte, central y sur: Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Con-
cepción, Estero Lenga, Río Tubul, Río Quenuir y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: se la había señalado solamente para
la Bahía de Concepción (Rivera, 1969).

Lichmophora flabellata (Grev.) Ag. var. flabellata
Lám. 4, Figs. 26, 27

AGARDH, C. A., Consp. Crit. Diat., p. 41 (1831). HUSTEDT, F., Raben-
horsts Krypt. Flora, 7(2):58, Fig. 581 (1931). HENDEY, N. L, Fish. Inv.,
4(5):168, Lám. 26, Fig. 5 (1964).

Valvas claviformes, lanceolado-cuneadas, con el extremo inferior en-
sanchado, capitado. Pseudorafe angosto, linear, Estrías finas, paralelas, salvo
en el extremo inferior donde son radiales 29-31 en 10 ¡; largo 115-142 p;
ancho 5-8 y.

Especie marina epífita; presente siempre en escasa cantidad en mues-
tras de la zona central y norte: Bahía de Coquimbo y Bahía de Dichato.
No había sido señalada para Chile.

Diatoma elongatum (Lyngbye) Ag. var. tenuis (Ag.) Van Heurck
f. minus (Grunow) Mayer
Lám. 4, Figs. 28, 29, 30

MAYER, A., Ber. Bayer. Bot. Ges., 24:101, Lám. 2, Figs. 35-38 (1940). CLEVE-
EULER, A., Sv. Vet-Akad, Handl., 4(1):24, Fig. 331 lm (1953).

Nuestras células concuerdan perfectamente con este taxon; desgracia-

damente el número de estrías no se pudo contar debido al escaso tamaño
de los frústulos.

280

Eje apical: 6-15 y; *transapical: 2-2.5 pu; costillas en número de 6-9
(generalmente 8) en 10 ¡.

Taxon de aguas dulces, presente en todos los lugares de recolección
de la zona central y norte, faltando en la zona sur: Bahía de Coquimbo, Bahía
de Dichato, Bahía de Concepción, Estero Lenga, Isla Santa María y Río Tubul.
Su abundancia fue siempre mínima.

No se la había señalado para nuestro país.

Diatoma hiemale (Lymgbye) Heiberg var. quadratum (Kitz.) Ross
Lám. 4, Figs. 31-32

ROSS, R., Trans. Roy Soc; Ser. B; 234:464 (1950).

Syn.: Diatoma hiemale var. mesodom (Ehr.) Grunow, pág. 357 (1862).
HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):103, Fig. 631 e-h (1931). CLEVE-
EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., IV. 4(1):20 (1953). VANLANDINGHAM,
S., Beih. Nova Hedwigia, 14:24, Lám. 24, Figs. 5-10, 15 (1964).

Largo 7-11 u; ancho (conectival) 4-5 u; costillas 3-4 en 10 p.
Variedad de aguas dulces. Las escasas células encontradas provienen de
la Bahía de Coquimbo.

Distribución conocida para Chile; Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Plagiogramma interruptum (Greg.) Ralfs var. interruptum
Lám. 4, Fig. 33

RALFS in PRITCHARD, Infus., p. 774 (1861), HUSTEDT, F., Rabenhorsts
Krypt. Flora, 7(2):110, Fig. 636 (1931).

Valvas linear a linear-lanceoladas, rectangulares en vista conectival, con
extremos ensanchados, redondeados. Pseudorafe angosto. Estrías transversales
19-24 en 10 y; eje apical 21-35 y; transapical 4-7 p.

Especie marina, epifita; muy escasa en muestras del Río Tubul, Río
Quenuir y Río Pudeto. No ha sido señalada anteriormente para Chile.

Dimerogramma minor (Greg.) Ralfs var. minor
Lám. 4, Fig. 34

RALFS, in PRITCHARD, Infus., pág. 790 (1861). DE TONI G., Syllogue
alg., 2:771 (1891). PERAGALLO et PERAGALLO, Diat. Mar. France, pág. 334,
Lám. 82, Figs. 13-14 (1897-1908). HUSTEDT, F. Rabenhorsts Krypt. Flora,
7(2):118, Fig. 640 (1931). HENDEY, N. IL, Fish. Inv., 4(5): 156, Lám. 27,
Fig. 12 (1964).

A

Eje apical 28-34 y; transapical 10-12 ¡; estrías 9-10 en 10 y.

Especie marina, ha sido encontrada epífita de algas rojas (Hendey 1964,
p. 156). En nuestro material siempre se presentó en escaso número y solamente
en muestras de la Bahía de Dichato.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange (Petit, 1889); Calbuco
(Krasske, 1939); Trípoli de Tiltil (Frenguelli, 1949); Santiago y alrededores
(Negrete, 1964).

Synedra fasciculata (Ag.) Kútz. var. fasciculata
Lám. 5, Fig. 35 %

KUÚTZING, F. T., Bacill., p. 68 (1844). PATRICK, R. £ REIMER, C., Monogr.
Acad. Nat. Sci., Phila., 13:141, Lám. 5, Figs. 17-18 (1966).
Eje apical 90-150 yu; transapical 4-8 ¡,; estrías 10-14 en 10 p.

Especie de aguas dulces y mixohalinas, epifita. Generalmente presente
en gran cantidad (“muy abundante” a “escasa”) en muestras de la zona central
y sur: Bahía de Dichato, Estero Lenga, Isla Santa María, Río Tubul, Río
Quenuir, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Synedra fasciculata var. truncata (Grev.) Patrick
Lám. 5, Fig. 36

PATRICK, R., in PATRICK K£ REIMER, Monogr. Acad. Nat. Sci., Phila.,
13:142, Lám. 5, Fig. 16 (1966).

Valvas linear-lanceoladas con extremos angostos, redondeados. Pseudo-
rafe ancho, linear lanceolado. Estrías en número de 10-15 en 10. Eje apical
29-140 y; transapical 47 p.

El número de estrías en esta variedad es algo variable. Patrick (loc. cit.)
las indica como de 10-15, coincidiendo con nuestras observaciones.

Variedad de aguas dulces y mixohalinas; pocas células observadas en
muestras de la Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Concepción,
Estero Lenga, Río Tubul y Río Quenuir. No ha sido señalada anteriormente
para Chile.

Synedra fulgens (Grev.) W. Sm. var. mediterranea Grunow
Lám. 13, Figs. 149, 150, 151, 152

GRUNOW, A., in VAN HEURCK, Syn. Diat. Belg., Lám. 43, Fig. 3 (1881).
HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):230, Fig. 717 d-e (1932).

— E

Valvas lineares, suavemente ensanchadas en la parte central y en los
extremos que son algo capitados. Surcos longitudinales muy aproximados al
borde. Pseudorafe angosta. Estrías paralelas, 17-18 en 10 ¡, salvo .en los ex-
tremos donde son claramente radiales, finalmente punteadas. Eje apical 220-
235 yu; transapical 10 ¿.

Se diferencia de la variedad tipo principalmente por poseer un mayor
número de estrías.

Variedad marina, litoral; encontrada con abundancia relativa de
“escasa” en muestras de la Bahía de Coquimbo y en el Golfo de Quetalmahue.
No ha sido señalada anteriormente para Chile.

Synedra gaillonii (Bory) Ehr. var. densestriata var. nov.
Lám. 14, Figs. 153, 154, 155

Striae crassiores et minor longitudo valvarum quam illae varietalis
gaillonii. Estriae 20-23 in 10 yu; longitudo 81-102 y. Latitudo 5.57 y.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Chiloé, Golfo de Quetalmahue
DIAT-CONC 106 EPIF, Departamento de Botánica, Universidad de Concep-
ción (Chile), TYPUS.

Valvas linear-lanceoladas con extremos redondeados. Pseudorafe nítida.
Area central ausente. Estrías paralelas, 20-23 en 10 y. Largo 81-102 y; ancho
5.57 y.

La variedad densestriata difiere de la variedad gaillonii por el mayor
número de estrías y por el menor tamaño de la valva. El pseudorafe es gene-
ralmente angosto, pero en algunos ejemplares es más ancho, llegando a tener
1/6 del ancho de la valva.

Fue determinada en material recolectado en el Estero Lenga (DIAT-
CONC 63, 90 EPIF) y en el golfo de Quetalmahue (DIAT-CONC 79, 106
EPIF). Siempre presente en escasa cantidad.

Synedra ulna (Nitz.) Ehr. var. ulna
Lám. 5, Fig. 37

EHRENBERG, C. G., Ber. Akad. Wiss. Berlin, p. 53 (1836). HUSTEDT, F.,
Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):195, Fig. 691 A, a-c (1932). PATRICK, R. £
REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:148, Lám. 7, Figs. 1-2 (1966).

Eje apical 84-240 ¡; transapical 6-7 u; estrías 12-13 en 10 p.

Especie de aguas dulces y mixohalinas, epífita. Presente en escasa can-
tidad en muestras de la Bahía de Coquimbo.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

==

Synedra ulna var. oxyrhynchus (Kútz.) Van Heurck
Lám. 5, Fig. 38

VAN HEURCK, H., Syn. Diat. Belg., p. 151, Lám. 39, Figs. 1A, 2 (1885).
HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):198, Fig. 691 B, q (1932).
Eje apical 70-105 yu; transapical 6-8 y; estrías 13-15 en 10 p.

Variedad de aguas dulces, amplia distribución. Encontrada en muestras
recolectadas en la Bahía de Dichato, Isla Santa María y Río Tubul; muy
rara.

Distribución conocida para Chile: Estación Pellimes (Krasske, 1939);
Santiago y alrededores (Negrete, 1964).

Asterionella formosa Hass. var. gracillima (Hantz.) Grunow
Lám. 5, Fig. 39

GRUNOW, A., in VAN HEURCK, Syn. Diat. Belg., Lám. 51, Fig. 22 (1881).
PATRICK, R. £ REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:160, Lám. 9,
Fig. 4 (1966).

Valvas linear-lanceoladas con extremos capitados levemente diferentes
en tamaño. Estrías transversales 21-22 en 10 ¡; largo 60.5 y; ancho 3-5 p.

Variedad de aguas dulces, principalmente en las más frías. Se encontró
una sola célula de esta variedad en muestras procedentes del Río Quenuir
(Zona sur). No había sido señalada para nuestro país.

Ceratoneis arcus (Ehrenberg) Kútzing var. arcus
Lám. 5, Fig. 40

KUTZING, F. T., Bacill., p. 104, Lám. 6, Fig. 10 (1844). VAN HEURCK, H..
Traité, p. 306, Lám. 10, Fig. 401 (1899). HUSTEDT, F. in SCHMIDT et al,
Lám. 269, Figs. 31-35 (1911); Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):179, Fig. 684 a-b
(1932).

Eje apical 55-90 yu; transapical 5-7 p; estrías 16-17 en 10 y.

Especie de aguas dulces, indicadora de aguas con desperdicios fenó-
licos; cosmopolita. Escasos ejemplares determinados en muestras de la zona
central y sur: Bahía de Dichato, Bahía de Concepción, Estero Lenga, Isla
Santa María y Río Pudeto.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Hb

Ceratoneis arcus var. amphioxys (Rabenhorst) Brun
Lám. 5, Fig. 41

BRUN, J., Diat. d. Alpes, p. 52, Lám. 2, Fig. 28 (1880). DE TONI, Syllogue
alg. p. 814 (1892). HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):179,
Fig. 683 d (1932).

Eje apical 33 ¡; transapical 6.5 py; estrías 17 en 10 y.

Variedad de aguas dulces que acompaña generalmente a la variedad
tipo. Una sola célula determinada en material de la Isla Santa María.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Ceratoneis arcus var. linearis Holmboe
Lám. 5, Fig. 42

HOLMBOE, J., Arch. Mathem. og Naturv., 21(8):30 (1899). HUSTEDT, F.,
Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):180, Fig. 684c (1932).

Eje apical 77-88 y; transapical 6 ,; estrías 17 en 10 y.

Variedad de aguas dulces, alcalófica, en muestro material tan escasa
como la variedad tipo y presente sólo en muestras de la zona central del
país: Bahía de Concepción e Isla Santa María.

Distribución conocida para Chile: señalada anteriormente sólo para el
Estero Lenga (Rivera, Parra y González, 1973).

Entopyla australis (Ehr.) Ehrenberg var. australis
Lám. 14, Figs. 156, 157

EHRENBERG, C. G., Ber. Akad. Wiss. Berl., pág. 6 (1848). DE TONI, G.,
Sylloge alg., 2:773 (1891), VAN HEURCK, H., Traité, p. 339, Fig. 96 (1899).
Mann, A., Contr. U. S. Nat. Herb., 10:323 (1907).

Eje apical 63-116 ¡; transapical 12-18 ¡; costillas 2.5-3.5 en 10 ,; estrías
21 .en. 10:00,

Especie marina, epífita, encontrada en todos los lugares recolectados
de la zona central y sur, algumas veces alcanzando valores de abundancia
relativa de “escasa”: Bahía de Dichato, Bahía de Concepción, Estero Lenga,
Isla Santa María, Río Tubul, Río Ouenuir, Río Pudeto y Golfo de Que-
talmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 19783.

— 33 —

Opephora lineata Edsbagge var. lineata
Lám. 5, Fig. 43

EDSBAGGE, H., Bot. Gothob., 6:57, Lám. 1, Fig. 3; Lám. 2, Fig. 2 (1966).
Valvas elípticas con extremos subredondeados. Costillas transapicales
paralelas, 10-11 en 10 ¡; Pseudorafe linear.
Eje apical 20 y; transapical 4 y.

Especie marina, ha sido encontrada como epífita de algas superiores
(Pylaiella litoralis). Determinada en muestras de la Bahía de Coquimbo, siem-
pre en pequeño número. No había sido señalada para Chile.

Opephora marina (Greg.) Petit var. marina
Lám. 5, Fig. 44

PETIT, P., Miss. Scient. Cap. Horn, 5:131 (1888). HUSTEDT, F., Raben-
horsts Krypt. Flora, 7(2):136, Fig. 656 (1931).
Eje apical 14-39; transapical 2-3.5 y; estrías 9-11,en 10 p.

Especie marina, litoral, cosmopolita. Uno de los taxa más característicos
del pelillo, presente en todas las muestras estudiadas, con abundancia relativa
de “escasa”: Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Concepción,
Estero Lenga, Isla Santa María, Río Tubul, Río Quenuir, Río Pudeto y Golfo
de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Trachysphenia australis Petit var. aucklandica Grunow
Lám. 5, Fig. 45

GRUNOW, A., in VAN HEURCK, Syn. Diat. Belg., Lám. 37, Fig. 1 (1881).
VAN HEURCK, H., Treat., p. 311, Fig. 85 (1896).

Se encontró muy pocas células de este taxon en las que se apreció una
ligera variación del número de estrías pues siendo señalada de 11-12 en 10 y
nuestros ejemplares presentaron 9 en 10 . Al parecer este caracter y la forma
de la valva es variable.

Variedad marina; presente exclusivamente en muestras de la Bahía
de Coquimbo. No ha sido señalada anteriormente para Chile.

—34—

ORDEN RAPHIDIOIDALES

Familia EUNOTICEAE

Eunotia exigua (Bréb.) Rabenhorst var. tridentula Ostrup
Lám. 14, Fig. 158

OSTRUP, E., Danske Diat., p. 172, Lám. 5, Fig. 106 (1910). HUSTEDT, F,,
Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):287 (1932). CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad.
Handl., IV. 4(1):102, Fig. 431 d (1953) como Eunotia tridentula var. protracta
A. Berg.

Difiere de la variedad tipo por presentar tres ondulaciones algo
agudas, en el lado dorsal. Largo 20 y; ancho 3 y; estrías 22 en 10 y.

Variedad de aguas límnicas, muy rara en el material estudiado, encon-
tramos una sola célula procedente de la Bahía de Dichato. No ha sido seña-
lada antes para nuestro país,

Eunotia tenella (Grunow) Hustedt var. tenella
Lám. 6, Fig. 46

HUSTEDT, F., in A. SCHMIDT, Atlas, Lám. 287, Figs. 20-25 (1913); Raben-
horsts Krypt. Flora, 7(2):284, Fig. 749 (1932) CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad.
Handl., IV. 4(1):104, Fig. 435 (1953).

Eje apical 20 y; transapical 4.5 u; estrías 16 en 10 y.

Especie de aguas dulces, encontrada corrientemente en pantanos. Una
célula observada en muestra recolectada en el Río Pudeto (zona sur).

Distribución conocida para Chile: Afluente del Lago Risopatrón, Río
Pascua, Río de Ventisquero Eisach, Termas de Puyehue, Calbuco, Puyuhuapi,
Bosque de lluvias del sur de Chile (Krasske, 1939); Lago Lynch (Krasske, 1949).

cn

ORDEN MONORAPHIDALES

Familia ACHNANTHACEAE

Cocconeis californica Grunow var. lengana Rivera
Lám. 6, Figs. 47, 48

RIVERA, P., in RIVERA, PARRA y GONZALEZ, Gayana, Bot., 23:29, Lám. 7,
Figs. 2-7 (1973).

Eje apical 10-25 y; transapical 6-13 pu; estrías 15-16 en 10 y. Taxon
de ecología aún poco conocida, descrita por Rivera (1973), para el Estero
Lenga. En nuestro material estuvo presente en todos los lugares de recolección
de la zona norte y central, llegando a veces a tener una abundancia relativa
de “muy abundante”: Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Con-
cepción, Estero Lenga, Isla Santa María y Río Tubul.

Distribución conocida para Chile: había sido señalada sólo para la
localidad tipo.

Cocconeis costata Gregory var. costata
Lám. 6, Fig. 49

GREGORY, W., Quart. Your. Micr. Soc., 3:39, Lám. 4, Fig. 10 (1855). CLEVE,
P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3):182 (1895). PERAGALLO et PERA-
GALLO, Diat. Mar. France, p. 10, Lám. 2, Fig. 10 (1897-1908). HUSTEDT, F.,
Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):332, Fig. 785 (1933). HENDEY, N. 1, Fish,
Inv., 4(5):179 (1964).

Eje apical 18-40 ¡; transapical 11-26 y; costillas 6-9 en 10 p.

Especie marina, litoral. En el material estudiado fue encontrada en
muestras de la zona central y sur, a veces alcanzando valores de abundancia
relativa de “abundante”: Bahía de Dichato, Bahía de Concepción, Estero
Lenga, Isla Santa María, Río Tubul y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Cocconeis costata var. hexagona Grunow

Lám. 14, Fig. 159

GRUNOW, A., in VAN HEURCK, Syn. Diat. Belg., Lám. 30, Figs. 15-17
(1881). CLEVE, P. T., Sv. Vetakad. Handl., n.f, 27(3):182 (1895).

=- 36 —

Se caracteriza principalmente por la forma de la valva y el número
de las costillas. El material tipo de Grunow proviene del Perú.

Eje apical 19 ¡; transapical 9 y; costillas 9-10 en 10 p.

Variedad marina; encontrada sólo en una muestra recolectada en la
Isla Santa María, un sólo frústulo fue observado.
Distribución conocida para Chile: Bahía de Concepción (Rivera, 1973).

Cocconeis dirupta Gregory var. dirupta
Lám. 14, Figs. 160, 161

GREGORY, W., Trans. Roy. Soc. Edinb., 21(4):19, Lám. 1, Fig. 25 (1857).
CLEVE, P. T., Sv, Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3):175 (1895). HUSTEDIT, F.,
Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):354, Fig. 809 a-c (1933). HENDEY, N. L, Fish.
Inv., 4(5):177 (1964).

Eje apical 20-35 y; transapical 14-26 yu; estrías 21 en 10 y en la valva
con rafe, 24-26 en 10 y en la valva con pseudorafe.

Especie marina, generalmente “abundante” en muestras de la zona
norte, central y sur del país: Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Estero
Lenga y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: “Trípoli de Mejillones (Moller, 1891)
y para los 21022'S, 70030"W (Krasske, 1941).

Cocconetis dirupta Gregory var. flexella (Janisch £ Rabenhorst) Grunow
Lám. 6, Figs. 50, 51

GRUNOW, A., in VAN HEURCK, H., Syn. Diat. Belgique, Lám. 29, Figs. 16-17
(1880). CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3): 175 (1895). HUSTEDT,
F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):355, Fig. 809 d-i (1933). CLEVE-EULER, A.,
Sv. Vet-Akad. Handl, IV. 4(5):13, Fig. 498 a-b (1953).

Eje apical 13-28 y; transapical 8-18 y; estrías 21-27 en 10 y.

Variedad marina; encontrada siempre en escaso número en muestras
de la Bahía de Coquimbo, Estero Lenga, Isla Santa María, Río Tubul, Río
Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: señalada solamente para el Estero
Lenga por Rivera (Rivera, Parra y González, 1973) y para la Bahía de Con-
cepción (Rivera, 1973).

po”, POR

Cocconeis formosa Brun var. marina var. nov.
Lám. 14, Figs. 162, 163, 164, 165, 166, 167

Syn. Cocconeis formosa sensu “T'sumura, K. (1967, Your. Yokohama City Univ.,
Ser. C-51, 18:10, Lám. 6, Figs. 6-11), non Brun 1891, p. 16, Lám. 18, Fig. 6.

Striis crassioribus quam illae varietatis formosa. Striae raphovalvae
10-11 in 10 y; pseudoraphovalvae 9-10 in 10 - Longitudo, 28-35 po Latitudo,
18-23 y.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Chiloé, Golfo de Quetalmahue.
DIAT-CONC 51 EPIF, Departamento de Botánica, Universidad de Concep-
ción (Chile), “TYPUS.

Valvas elípticas, casi planas. Valva con rafe: anillo nítido en el margen
valvar; área axial angosta, limear; área central angosta, dilatada transversal-
mente y más angosta hacia los bordes valvares. Rate filiforme, recto; estrías
radiales, curvas, formadas de fuertes punteaduras que le dan un aspecto ca-
racterístico, 10-11 en 10 p. Valva con pseudorafe: pseudorate ancho, linear
a lanceolado; estrías como en la otra valva algo menos numerosas, 9-10 en
10 y. Largo 28-35 yu; ancho 18-23 y.

Fue determinada en muestras de la zona sur del país, algunas veces
con abundancia relativa de “escasa”: Golfo de Quetalmahue, Río Quenuir
y Río Pudeto.

Cocconeis molesta Kiútzing var. crucifera Grunow

GRUNOW, A., in VAN HEURCK, H., Syn. Diat. Belgique, Lám. 30, Figs. 20-
23 (1880). CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3):174, (1895). PE-
RAGALLO et PERAGALLO, Diat. Mar. France, p. 14, Lám. 3, Fig. 30 (1897-
1908). HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):352, Fig. 805 c-d (1933).

Difiere de la variedad tipo porque la valva con rafe presenta un en-
sanchamiento transversal del área central.

Eje apical 18-22.5 yu; transapical 11-12 pu; estrías 29-30 en 10 y.

Variedad marina, epífita especialmente de algas superiores.

Las pocas células encontradas provienen de muestras recolectadas en el
Estero Lenga y en el Golfo de Quetalmahue. En nuestro país ha sido señalada
exclusivamente para la Bahía de Concepción (Rivera, 1969, p. 56) como
Cocconeis molesta var. molesta.

Be

Cocconeis nortina sp. nov.
Lám. 15, Figs. 168, 169, 170, 171, 172

Valvae ellipticae usque elliptica-lanceolatae, apicibus rotundatis. Pseudo-
raphovalvae: area axialis angusta, lineari-lanceolata; area centralis perangusta,
transversa dilatata im uno aut in ambibus lateribus margine approximata.
Raphovalvae: area axialis angusta, lineari-lanceolatae; area centralis angusta,
transversa dilatata im ambibus lateribus margine terminas in 1-2 brevibus
striis; rapha filiformis. Striis in ambibus valvis distincte, punctatis, centralibus
parallelis (16-18 in 10 ¡), radiatis in apicibus (20-22 in 10 ¡). Longitudine:
24-30 y, latitudine 10-12 y.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Coquimbo, Bahía de Coquimbo.
DIAT-CONC 84 EPIF, Departamento de Botánica, Universidad de Concep-
ción (Chile), TYPUS.

Valvas elípticas a elíptico-lanceoladas con extremos redondeados, 24-
30 y de largo y 10-12 y de ancho. Valva con pseudorafe: área axial angosta,
linear-lanceolada; área central muy angosta, dilatada transversalmente a uno
o ambos lados y alcanzando corrientemente los bordes de la valva. Valva con
rafe: área axial angosta, linear lanceolada; área central angosta, dilatada
transversalmente a ambos lados y alcanzando casi siempre los bordes de la
valva o terminando muy cerca de ella en 1-2 cortas estrías; rafe filiforme. En
ambas valvas las estrías son claramente punteadas, paralelas al centro (16 en
10 u) y radiales hacia los extremos (20-22 en 10 p).

Cocconeis nortina se asemeja a Cocconeis oblongata Edsbagge (Okologie
der marinen Angehefteten Diatomeen, p. 65, Lám. 1, Fig. 7; Lám. 2, Fig. 7,
1966), pero difiere de ella en que las estrías son claramente punteadas en
ambas valvas, porque el área central se dilata transversalmente en ambas
valvas alcanzando corrientemente hasta el margen o bien se dilata a un
sólo lado, porque las estrías son más radiales hacia los extremos valvares y
porque éstos son más redondeados. La valva con pseudorafe es parecida, por
el tipo de ornamentación, a aquella del Cocconeis placentula Ebhr.

Fue encontrada en muestras recolectadas en la Bahía de Coquimbo;
muy rara.

Cocconeis placentula Ehr. euglypta (Ehr.) Grunow
Lám. 6, Fig. 52

GRUNOW, A., Diat. Fr. J. Land, Lám. 1, Fig. 3 (1884). CLEVE, P. T., Sv.
Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3):170 (1895). HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt.
Flora, 7(2):349, Fig. 802d (1933). CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl.,
IV. 4(5):8, Fig. 492 e-£ (1953).

=39=

Eje apical 12-24 po transapical 8-13 yo estrías 18-22 en 10 po

Variedad de aguas dulces y salobres, epífita. En el material estudiado
alcanzó los máximos valores de abundancia relativa: “muy abundante”, “abun-
dante” o “escasa”. Fue determinada en muestras de la zona norte, central y
sur: Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Concepción, Isla Santa
María, Río Tubul, Río Quenuir, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue, fal-
tando solamente en las muestras del Estero Lenga donde sin embargo ha
sido señalada por Rivera (Rivera, Parra y González, 1973).

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Cocconeis pseudomarginata Gregory var. pseudomarginata
Lámi 157 Figs. MINI 175

GREGORY, W., “Trans. Roy. Soc. Edinb., 21:492, Lám. 9, Fig. 27, (1857).
CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3); 178 (1895), HUSTEDT, F.,
Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):359, Fig. 813 (1833). FRENGUELLI, J., Rev.
Mus. La Plata, Bot., N. S., 1(5):273, Lám. 1, Fig. 12 (1936). HENDEY, N. L,
Fish. Inv., 4(5); 179, Lám. 28, Fig. 20 (1964).

Valvas ampliamente elípticas. Valva com pseudorafe, con área axial
lanceolada, a cada lado de la cual se encuentran depresiones lunadas. Valva
con rafe con área axial angosta, lanceolada; rafe derecha, delgada, . termi-
nando a cierta distancia del margen de la valva, nódulos polares con una
pequeña área hialina lunada. Area central a veces algo dilatada. Estrías ra-
diales punteadas, 19-23 en 10 y en la valva con rafe y 21-27 en la valva con
pseudorafe. Eje apical 27-60; transapical 17-41 p.

Las áreas lunadas longitudinales de nuestros ejemplares son levemente
más dilatadas que las representadas para esta especie, lo que la acercaría al
Cocconeis vitrea Brun, pero el número de estrías para este taxon es mucho
menor.

Especie marina, epífita, planctónica accidentalmente, encontrada con
abundancia relativa de “escasa” en material recolectado en el Golfo de Que-
talmahue. No se la ha señalado anteriormente para Chile.

Cocconeis scutellum Ehrenberg var. scutellum
Lám. 6, Fig. 53

EHRENBERG, C. G., Infus., pág. 194, Lám. 14, Fig. 8 (1838). CLEVE, P. T.,
Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3):170 (1895). HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt.
Flora, 7(2):337, Fig. 790 (1933). HENDEY, N. I., Dicovery Rep., 16:342 (1937);
Fish. Inv., 4(5):180, Lám. 27, Fig. 8 (1964).

Eje apical 14-29 y; transapical 9-21 ¡; estrías 10-12 en 10 p.

40 =

Especie marina, epífita. En nuestro material se presentó generalmente
en gran cantidad, alcanzando valores de abundancia relativa de “muy abun-
dante”, “abundante” o “escasa”. Es una de las siete especies más caracterís-
ticas del pelillo debido a la razón antes mencionada y a que estuvo presente
en todos los lugares muestreados.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Cocconets scutellum var. ornata Grunow
Lám. 6, Fig. 54; Lám. 15, fig. 176

GRUNOW, A,, p. 12, 1868 (1870). CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl.,
4(5):6, Fig. 489 cd (1953). HENDEY, N. L, Fish. Invest., 5(4):180 (1964).

Algunos autores, entre ellos S. Vanlandingham, dan a esta variedad
como sinónimo de la variedad tipo. Creemos que se trata de una buena
variedad por ciertas características que posee, entre ellas el gran tamaño de
las punteaduras que son fuertemente marcadas y porque las estrías no ter-
minan en el borde de la valva en el típico triángulo de punteaduras de la
variedad tipo sino que lo hacen solamente en una doble corrida de puntos.
Otros autores como CieveEuler (1953), Hendey (1964) etc., han mantenido
la variedad ornata de Grunow.

Eje apical 14-21.5 y; transapical 8-13.5 ¡; estrías en número de 10-11
en 10 po

Variedad marina, cosmopolita, presente en nuestro material siempre en
pequeña cantidad y sólo en muestras recolectadas en la Bahía de Coquimbo
y en el Río Pudeto.

Distribución conocida para Chile: se la ha señalado solamente para la
Bahía Orange en Cabo de Hornos (Petit, 1889).

Cocconeis scutellum var. stauroneiformis Rabh.
Lám. 6, Figs. 56, 57

RABENHORST, L., Flora Europ. Alg., 1:101 (1864). HUSTEDT, F., Raben-
horsts Krypt. Flora, 7(2):339, Fig. 792 (1932).

Eje apical 12.5-27.5 y; transapical 7-15 yu; estrías 10-13 en 10 y.

Variedad marina, eurihalina, epífita, cosmopolita.

Este taxon acompañó siempre a la variedad tipo y también alcanzó
los valores máximos de abundancia relativa: Bahía de Coquimbo, Bahía de
Dichato, Bahía de Concepción, Estero Lenga, Isla Santa María, Río Tubul,

-%Y-

Río Quenuir, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue. Es por ello otro de los
taxa más característicos de Gracilaria verrucosa.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange (Petit, 1889) y Calbuco
(Krasske, 1939).

Cocconeis thumensis Mayer var thumensis
Lám. 6, Fig. 55

MAYER, A., Bayer. Krypt. Forsch. 1, pág. 199, Lám. 6, Fig. 24 a-b (1919).
HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):346, Fig. 801 (1933). CLEVE-
EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., IV. 4(5):9, Fig. 493 cd (1953).

Eje apical 9-13 y; transapical 6-8 yu; estrías 12-15 en 10. y.

Especie de aguas dulces presente siempre en escasa cantidad en nuestro
material, pero en las tres zonas estudiadas: Bahía de Coquimbo, Bahía de Di-
chato, Estero Lenga, Isla Santa María y Río Pudeto.

Distribución conocida para Chile: Lago Llanquihue (Krasske, 1939);
Laguna Chica de San Pedro (Rivera, 1970).

Achnanthes brevipes Ag. var. intermedia (Kútz.) Cleve
Lám. 6, Figs. 58, 59, 60, 61

CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3):193 (1895).
Eje apical 24-47 yu; transapical 6-9 y; estrías 11-13 en 10 p.

Variedad marina y de aguas mixohalinas, epífita.

Bastante común en las muestras de la zona norte, central y sur, pero
en escasa cantidad. Se la encontró en la Bahía de Coquimbo, Bahía de
Dichato, Estero Lenga, Río Tubul, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Río Pascua, Afluente del Lago Riso-
patrón, Calbuco, cerca de Puyuhuapi, Isla Llancahue, Ramuncho (Krasske,
1939); Lago Salado en Atacama (Patrick, 1961).

Achnanthes exigua Grunow var. constricta Hustedt
Lám. 6, Figs. 62, 63

HUSTEDT, F., in SCHROEDER, Hedwigia, 63(2): 145, Lám. 1, Figs. 7-8 (1922).
PATRICK, R. £ REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:258, Lám. 16,
Figs. 23-24 (1966).

Difiere de la variedad tipo por la constricción de la valva en su parte
media y por sus estrías algo más numerosas, especialmente en la valva con

e

rafe. Eje apical 13.5 u; transapical 5 p; estrías 22-24 en 10 y, en la valva
con pseudorafe y 27 en 10 ¡y en la valva con rafe.

El único ejemplar encontrado difiere de aquellos representados por
Patrick £ Reimer (loc. cit.) en que en la valva con pseudorafe el área central
carece de una estría más corta, alcanzando por lo tanto hasta el borde valvar.

Variedad de aguas dulces de ecología aún poco conocida.

Se encontró un sólo frústulo en muestra procedente de la Bahía de
Coquimbo. No había sido señalada anteriormente para Chile.

Achnanthes hauckiana Grunow var. rostrata Schulz
Lám. 6, Figs. 64, 65

SCHULZ, P., Bot. Arch. 13:191, Fig. 40 (1926). HUSTEDT, F., in PASCHER,
Siússw. Fl. Mitteleuropas, 10(2):202 (1930); Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):388
(1933). CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., IV; 4(5):45, Fig. 582 g-k
(1953). PATRICK, R. et C. REIMER Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:269,
Lám. 17, Figs. 33-34 (1966).

Eje apical 13-20 ¡; transapical 5-7.5 y; estrías 13-14 en 10 y.

Variedad de aguas dulces y mixohalinas que se presenta generalmente
con la variedad tipo.

Presente con muy bajo múmero de células en la Bahía de Dichato
(zona central), en el Río Quenuir y Río Pudeto (zona sur).

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Achnanthes lanceolata (Brébisson) Grunow var. lanceolata
Lám. 6, Fig. 66

GRUNOW, A., in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad, Handl. 17(2):23 (1880).
DE TONI, G., Syllogue alg., 2:485 (1891). VAN HEURCK, H., Traité, p. 282,
Lám. 8, Fig. 336 (1899). HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora., 7(2):408,
Fig. 863 (1933).

Eje apical 13-20 yu; transapical 4-5 yu; estrías 14 en 10 y.

Taxon de aguas dulces, encontrada por Tavares (1971) en bromeliaceas.

Escasas células encontradas en muestras del Río Tubul (zona central)
y del Río Pudeto (zona sur).

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

58.

Achnanthes lanceolata var. dubia Grunow
Lám. 6, Fig. 67

GRUNOW,, A., in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl., N. E., 17(2):
23 (1880). PATRICK, R. £* REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila,, 13:
271, Lám. 18, Figs. 11-15 (1966).

Difiere de la variedad tipo por sus extremos claramente producidos,
rostrados a subrostrados. Estrías radiales, 12-13 en 10 y. Eje apical 25 po
transapical 7.5 p.

Variedad de aguas dulces con un amplio rango de tolerancia a dife-
rentes condiciones ecológicas.

Solamente encontrada en muestras de la Bahía de Coquimbo (zona
norte), muy poco frecuente.

Distribución conocida para Chile: se la ha señalado para el río Baguales,
el Arroyo Toro y la Posa Kark, todas en Patagonia (Miller, 1909).

Achnanthes robusta sp. nov.
Lám. 7, Figs. 68, 69

Valvis ellipticae-lanceolatis, apicibus leniter rostratis. Raphovalvae: area
axialis angusta, lanceolata; area centralis lata, oblonga; rapha filiformis, api-
cibus proximalibus densis, apicibus distalibus eodem cursu declinatis. Pseudo-
raphovalvae: area axialis angusta lanceolata; area centralis in uno latere
margine valvae approximata ubi striae sunt breviores et inaequales in longi-
tudine. Striis radiatis in ambabus valvis, 14-16 in 10 y. Longitudine 25-27 po
latitudine 7.5-10 y.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Llanquihue, Río Quenuir.
DIAT-CONC 9 EPIF, Departamento de Botánica, Universidad de Concepción
(Chile), TYPUS.
Valvas elíptico-lanceoladas con cortos extremos subrostrados. Valva con rafe:
área axial angosta, lanceolada; área central grande, oblonga; rafe filiforme,
extremos proximales notorios, extremos distales curvados en la misma direc-
ción. Valva con pseudorafe: área axial angosta, lanceolada; área central apro-
ximada a un lado del margen de la valva que lleva cortas estrías de diferente
longitud. Eje apical 25-27 yu; transapical 7.5-10 u; estrías radiales en ambas
valvas, 14-16 en 10 y.

Esta especie presenta un cierto parecido con Achnanthes koenigii Si-
monsen (Kieler Meersforschungen, 15(1):76, 1959), nom. nud., de la cual sin

pS A

embargo se diferencia por el mayor número de estrías, por la forma del área
central especialmente en la valva con pseudorafe y por el contorno más lan-
ceolado de la valva.

Se la encontró solamente en una muestra del Río Quenuir, muy rara.

Achnanthes temperei M. Perag. var. temperei
Lám. 7, Figs. 70-71

PERAGALLO, M., in TEMPERE K£ PERAGALLO, Diat. Monde Entier,
22 ed., p. 100 (1908). PATRICK, R. £ REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci.
Phila., 13:278, Lám. 19, Figs. 12-13 (1966).

Valvas linear a linear-lanceoladas, a veces con una suave constricción
en el centro, extremos cuneado-redondeados. Valva con rafe con stauro rectan-
gular que alcanza los bordes; área axial linear; rafe curvada, doblada, con
los extremos terminales curvados en la misma dirección; estrías areoladas,
suavemente radiales, 7-9 en 10 y. Valva con pseudorafe con grandes nódulos
terminales, pseudorafe angosto, excéntrico; estrías como en la valva con rafe,
8 en 10 po

Eje apical 44-59 yu; transapical 14-19 y.

Se diferencia de Achnanthes brevipes por los grandes nódulos de la
valva con pseudorafe.

Especie de aguas dulces, especialmente abundante en los ríos costeros.

Las escasas células encontradas correspondieron a muestras recolectadas
en el Estero Lenga (zona central).

Distribución conocida para Chile: solamente señalada por Rivera, 1973,
para la Bahía de Concepción.

Rhoicosphenia curvata (Kiitz.) Grun..ex Rab. var. curvata
- Lám. 7, Figs. 72, 73

RABENHORST, L., Fl. Europaea Alg., p. 112, 342 (1864). PATRICK, R., £
REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:282, Lám. 20, Figs. 1-5 (1966).

Eje apical 19-44 ¡; transapical 5-6.5 ¡15 estrías 13-14 en 10 y al centro
de la valva y 16-20 en los extremos.

Especie de aguas dulces y mixohalinas, epífita. Fue observada en la
mayoría de los lugares muestreados, pero siempre en escasa cantidad: Bahía
de Coquimbo, Río Tubul, Río Quenuir, Río Pudeto, Bahía de Dichato, Estero
Lenga, Isla Santa María y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1978.

4D) =

ORDEN BIRAPHIDALES
Familia NAVICULACEAE

Mastogloia pumila (Grun.) Cleve var. pumila
Lám. 7, Fig. 7%

CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., N. F., 27(3):157 (1895). PATRICK, R.
£ REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:301, Lám. 20, Figs. 16-17
(1966).

Eje apical 19-25 y transapical 9-10 ¡; estrías 26-30 en 10 1 cámaras
4-5 en 10 y.

Especie marina y de aguas mixohalinas, epífita. Determinada en mues-
tras del Río Tubul y Golfo de Quetalmahue, muy pocos frústulos.
Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Diploneis didyma Ehrenberg var. didyma

EHRENBERG, C. G., Mikrogeol., Lám. 18, Fig. 69 etc. (1854). CLEVE, P. T.,
Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 26(2):90 (1894). HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt.
Flora, 7(2):685, Fig. 1075 a-b (1937). CLEVE-EULER, A., Sv, Vet-Akad. Handl.,
IV.. 4(5):73, Fig..637 (1953). HENDEY, N. L,. Fish. Inv., 4(5):226, Lám. 32,
Fig. 12 (1964).

Eje apical 36-45 y; transapical 14-20 y; estrías 9-11 en 10 y.

Especie marina y de aguas mixohalinas, epiífita. Las escasas células
encontradas provienen del Estero Lenga, Río Tubul (zona central) y Río
Quenuir ,Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue (zona sur).

Distribución conocida para Chile: ha sido señalada para Calbuco
(Krasske, 1939) y para la Bahía de Concepción (Rivera, 1969).

Diploneis incurvata (Greg.) Cleve var. incurvata
Lám. 7, Fig. 75

CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., 26(2):84(1894). HUSTEDT, F., Raben-
horsts Krypt. Flora, 7(2):593, Fig. 1012, b-d (1937).

Valvas elípticas, contraídas en la parte central, extremos agudo-redon-
deados. Nódulo central cuadrangular, con cuernos de dirección paralela.

A

Costillas 11 en 10 u, paralelas al centro y radiales en los extremos. Eje apical
71-73 u; transapical 22-23 y; en el medio 13.5-14 y.

Especie marina, litoral. Escasas células encontradas en material del Es-
tero Lenga y Río Pudeto. No se la había señalado para nuestro país.

Diploneis papula (Schmidt) Cleve var. constricta Hustedt
Lám. 7, Fig. 76

HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):680, Fig. 1071d (1937).
Difiere de la variedad tipo por la constricción que presenta en la parte

central de la valva. Eje apical 32 y; transapical 12.5 yu; costillas 11-12 en 10 ,.
Variedad marina; en nuestro material se encontró una sola célula pro-

cedente del Golfo de Quetalmahue. No ha sido señalada anteriormente para

Chile.

Diploneis subovalis Cleve var. subovalis
Lám. 15, Fig. 177

CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 26(2):96, Lám. 1, Fig. 27 (1894).
HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):667, Fig. 1063a-b (1937).
TSUMURA, K., Your. Yokohama Munic. Univ., Ser. C-14, 47:8, Lám. 2, Fig. 51

(1956).

Eje apical 26-38 ¡; transapical 13-20 yu; estrías 11-13 en 10 y.
Especie de aguas dulces; muy pocas células encontradas en muestras
de la zona central y sur: Estero Lenga, Isla Santa María, Río Tubul, Río
Quenuvir, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue.
Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.
Frustulia vulgaris (Thw.) De Toni var. vulgaris
Lám. 7, Fig. 77

DE TONI, Syll. Alg., 2(1): 280 (1891). HUSTEDT, F., Mitteleur., p. 211,
Fig. 327 (1930). PATRICK, R. £ REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila.,
13:309, Lám. 22, Fig. 3 (1966).

Eje apical 50 y; transapical 9 y; estrías 24 en 10 y al centro, mucho
más numerosas hacia los extremos, 34 en 10 me

Taxon de aguas dulces con bajo contenido mineral. En el material
estudiado se observó una sola célula proveniente de pelillo recolectado en
el Río Tubul.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

a

Pleurosigma intermedium W. Sm. var. intermedium
Lám. 7, Figs. 78-79

SMITH, W., Syn. Brit. Diat., p. 64, Lám. 21, Fig. 200 (1853). HENDEY, N. IL,
Fish. Inv., 4(5):244 (1964).

Eje apical 114-120 y; transapical 16 y; estrías oblicuas, 22 en 10 p;
estrías transversales 23-24 en 10 y.

Especie marina; solamente encontrada en muestras del Estero Lenga,
muy rara.

Distribución conocida para Chile: ha sido señalada sólo para la Bahía
de Concepción (Rivera, 1969).

Pleurosigma naviculaceum Breb. var. naviculaceum

Lám. 8, Fig. 80

BREBISSON, A., Diat. Cherb., p. 17, Fig. 7 (1854). HEURCK, H. V., Traité,
p. 252, Lám. 6, Fig. 266 (1899). ALLEN, W. £ CUPP, E. E., Ann. Bot. Gard.
Buitenzorg, 44:157, Figs. 103-103 a (1935).

Eje apical 105-110 y; transapical 19-20; estrías 18-20 en 10 y.

Especie marina, nerítica, cosmopolita; presente con escasa cantidad en
muestras del Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: solamente indicada para la Bahía
de Concepción (Rivera, 1969).

Pleurosigma nicobaricum Grun. var. nicobaricum

GRUNOW, A., in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl., 17 (2):51
(1880). CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl. n.f., 26(2):36 (1894).

Una de las características importantes de esta especie es el hecho que
las estrías oblicuas están más separadas en la parte central de la valva. El
número de estrías de este taxon ha tenido variaciones según los diferentes
autores. Así, mientras De Toni y Grunow han indicado que son 15-161% en
10 y, otros como Van Heurck han señalado 18-20, Peragallo 20-23, etc. Los
valores por nosotros encontrados concuerdan con estos dos últimos autores.

Eje apical 70-73 ¡,; transapical, 20-22 u; estrías oblicuas 18-19 al centro
y 20-21 en los extremos; estrías transversales 22 en 10 y en el centro y en
los extremos.

Especie marina; encontrada sólo en muestras de la Bahía de Coquimbo,
muy escasa.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Taltal y para los 20039'S,
70020"W (Krasske, 1941).

Pleurosigma normanii Ralfs var. normanit
Lám. 8, Figs. 81, 82

RALES in PRITCHARD, A,, Infus., p. 919 (1891). CUPP, E. E., Bull. Scripps.
Inst. Oceanogr., 5(1):196, Fig. 148 (1943). HENDEY, N. I,, Fish. Invest., 4(5):
244 (1964).

Eje apical 108-200 y; transapical 15-29 y; estrías oblicuas 17-20 en 10 y;
transversales 20-23 en 10 y.

Especie marina, cosmopolita; presente en escaso número en muestras
recolectadas en la zona central y sur de Chile: Río Tubul, Río Quenuir, Río
Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: solamente señalada para la Bahía
de Concepción (Rivera, 1969).

Gyrosigma tenuissimum W. Sm. var. angustissima Simonsen
Lám. 15, Fig. 178

SIMONSEN, R., Kieler Meeresf., 15(1):83, Lám. 12, Fig. 7 (1959).

Valvas lineares, de lados paralelos, con los extremos suavemente sig-
moides. Rafe derecha, central, excéntrica en los extremos. Estrías transapicales
notorias, 21-22 en 10 y; estrías longitudinales más finas y numerosas, alre-
dedor de 24 en 10 y. Eje apical 114-118 u; transapical 6-6.5 y.

Variedad de ecología aún no bien conocida.

Las escasas células encontradas provienen todas del Golfo de Quetal-
mahue. No había sido señalada para Chile.

Caloneis oregonica (Ehr.) Patrick var. oregonica
Lám. 8, Fig. 83

PATRICK, R., in PATRICK £ REIMER, Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila.,
13:581, Lám. 53, Fig. 6 (1966).

Valvas linear-lanceoladas con extremos agudo-redondeados. Area axial
de aproximadamente 1/3 el ancho de la valva, con lados paralelos salvo en

ib =

los extremos donde se estrecha considerablemente. Area central orbicular.
Rafe derecha con los extremos medianos curvados en la misma dirección. Línea
longitudinal a ambos lados de la valva colocada cerca del borde.

Estrías más o menos paralelas, 9 en 10 y. Eje apical 111.2 y; trans-
apical 20 y.

Especie marina y de aguas mixohalinas. Sólo una célula encontrada en
material recolectado en el Golfo de Quetalmahue. No ha sido señalada antes
para Chile.

Stauroneis anceps Ehr. var. anceps
Lám. 8, Fig. 84

EHRENBERG, C. G., Abh. Akad. Berlin Physik, 1841, p. 34, Lám. 2, Fig. 1, 18
(1843). HUSTEDT, F.. Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):771, Fig. 1120a (1959).

Eje apical 32 ¡,; transapical 8 y; estrías 24 en 10 y.

Especie indicadora de aguas con alta acidez; un sólo frústulo observado
en muestra del Río Tubul.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera (1969).

Stauroneis desiderata Cleve var. desiderata
Lám. 8, Fig. 85

CLEVE, P. T., in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl., 17(2):14,
Lám. 3, Fig. 58 (1880). HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2); 823,
Fig. 1165 (1959).

_Valvas linear-lanceoladas con extremos anchos, capitados. Rafe derecha,
delgada, con los extremos terminales curvados en dirección contraria. Area
axial angosta, linear; área central suavemente ensanchada. Stauro angosto, li-
near, algo más ensanchado hacia los bordes de la valva. Estrías radiales en
toda la valva, 16-18 en 10 y al centro, 17-20 en 10 p en los extremos. Eje
apical 48-50 y; transapical 14-16 y.

Especie de aguas mixohalinas y marinas; solamente observada en el
Estero Lenga y siempre en pequeño número. No ha sido señalada anterior-
mente para Chile.

ES

Stauroneis lapponica Cleve-Euler var. lapponica

Lám. 8, Fig. 86

CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., 21(3):13, Lám. 1, Fig. 8 (1895).
HUSTEDT, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):802, Fig. 1150 (1959).

Valvas linear-lanceoladas, a veces algo comprimidas en la parte central,
con extremos suavemente disminuidos, rostrado-redondeados. Rafe derecha,
filiforme. Area axial angosta, linear, algo más ensanchada en la parte central;
área central ancha; stauro alcanzando los bordes valvares. Estrías claramente
radiales 20-25 en 10 yu. Eje apical 16-22 yu; transapical 3-4 y.

Especie de aguas límnicas; pocos ejemplares encontrados en muestras
de la zona norte y central; Bahía de Coquimbo, Bahía de Concepción, Estero
Lenga e Isla Santa María. No ha sido señalada anteriormente para Chile.

Pinnularia baltica (Schulz) Cleve-Euler var. baltica
Lám. 8, Fig. 88

CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., 5(4):9, Fig. 980 A (1955). KRASSKE,
65 Arch! Hydrobiol., 35:395, Lám. 11, "Fig. 44 (1939), cómo Pinnularia
insociabilis.

Eje apical 47-57 ¡; transapical 10-12 y; estrías 13-14 en 10 y.

Especie marina y de aguas mixohalinas; bastante rara en muestras del
Estero Lenga.

Distribución conocida para Chile: señalada solamente por Krasske (loc.
cit.) para Calbuco.

Pinnularia divergens W. Sm. var. divergens
Lám. 8, Fig. 89

SMITH, W., Syn. Brit. Diat., 1:57, Lám. 18, Fig. 177 (1853). PATRICK, R. £
REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:603, Lám. 56, Fig. 1 (1966).

Eje apical 44-74 y; transapical 8-11 pu; costillas 10-13 en 10 y.

Especie de aguas límnicas, principalmente de aquellas con bajo conte-
nido mineral, cosmopolita. Escasas células encontradas en muestra recolectada
en el Río Pudeto.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

—

Pinnularia viridis (Nitz.) Ehr. var. minor Cleve
Lám. 8, Fig. 87

CLEVE, P. 'T., Acta Soc. Fauna Fl. Fenn., 8(2):22, Lám. 1, Fig. 2. (1891),
PATRICK, R. £ REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:641, Lám. 64,
Fig. 7 (1966).

Se diferencia de la variedad tipo por la forma del área central la cual
generalmente es redonda a un sólo lado o bien dilatada en stauro a uno o
ambos lados. Es también característico de la variedad minor el ancho del área
axial que puede alcanzar a 1/3 Ó 1/4 del ancho de la valva. Eje apical 70 y;
transapical 16 y; estrías radiales al centro, convergentes en los extremos, 9
en 10 y.

Variedad de aguas dulces; muy rara en el material examinado, sólo

encontrada en la Isla Santa María. No ha sido señalada anteriormente para
Chile.

Navicula accomoda Hustedt var. accomoda

Lám. 9, Fig. 90

HUSTEDT, F., Arch. Hydrobiol., 43:446, Lám. 39, Figs. 17-18 (1950). PA-
TRICK, R. £ REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:468, Lám. 44,
Fig. 7 (1966).

Valvas lanceoladas con extremos rostrados. Rafe derecha, con los ex-
tremos medianos distantes, extremos terminales no claros. Area axial muy
angosta, algo dilatada hacia el centro; área central ausente. Estrías más o
menos paralelas, algo más separadas en el centro de la valva que en los
extremos. Eje apical 18-19 y; transapical 6-6.5 y; estrías 20-24 en 10 u.

Especie característica de aguas contaminadas; solamente determinada
en muestras recolectadas en la zona sur del país: Río Pudeto, Golfo de Que-
talmahue. No había sido señalada para Chile.

Navicula decussis Ostrup var. decussis
Lám. 9, Fig. 91

OSTRUP, Danske Diat., p. 77, Lám. 2, Fig. 50 (1910). PATRICK, R. £
REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:518, Lám. 49, Fig. 15 (1966).

Patrick (loc. cit., p. 519) indica que las estrías son lineadas, y Cleve-
Euler (1953, p. 175) las señala como “finamente lineadas”. En el único ejem-
plar encontrado no fue posible definir esta característica a pesar de las obser:

7 0

vaciones realizadas con contraste de fases y contraste de interferencia. El
resto de las características coincide perfectamente con este taxon, e incluso
la presencia de un punto aislado en el área central que menciona Patrick
(loc. cit.) y que no figura en la descripción original de Ostrup.

Eje apical 26 y; transapical 8 y; estrías 15 al centro y 19-20 en 10 y
en los extremos.

Especie de aguas límnicas; muy rara en nuestro material, determinada
en muestra de la Bahía de Coquimbo.

Distribución conocida para Chile: solamente señalada por Krasske (1939)
para el Lago Llanquihue.

Navicula dicephala (Ehr.) W. Sm. var. elginensis (Greg.) Cleve

CLEVE, P. T., Syn. Nav. Diat., 27(3):21 (1895). TSUMURA, K., Your. Yoko-
hama Munic. Univ., Ser. C-14, 47:9, Lám. 2, Fig. 38 (1956).

Eje apical 21-23 ¡; transapical 7.5-8 yu; estrías 12-16 en 10 ¿.

Variedad de aguas límnicas; muy rara en muestras del Río Tubul.

Distribución conocida para Chile: señalada sólo para la Bahía de Con-
cepción (Rivera, 1969).

Navicula exigua Greg. ex Grun. var. exigua
Lám. 9, Fig. 92

GRUNOW, A. in V. HEURCK, H., Syn. Diat. Belg., Lám. 8, Fig. 32 (1880).
PATRICK, R. £% REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:522,
Lám. 49, Fig. 23 (1966).

Eje apical 19-20 y; transapical 9 y; estrías 14 en 10 y al centro y 20
en los extremos.

Especie de aguas dulces y mixohalinas de amplia distribución geo-
gráfica. Los escasos frústulos observados provienen del Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Calama (Frenguelli, 1930);
Trípoli de San Pedro de Atacama (Frenguelli, 1934); Calbuco, Lago Puyehue,
Lago Rupanco, Lago Llanquihue (Krasske, 1939); cerca de Bahía Inútil, Mallín
Chileno, Cabo Troward (Krasske, 1949).

==

Navicula finmarchica (Cleve £ Grun.) Cl. var. finmarchica
Lám: 9, Fig. 93

CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., 27(3):28 (1895). HENDEY, N. 1, Fish,
Inv., 4(5):198, Lám. 30, Fig. 5 (1964).

Este taxon está considerado como de bastante variable con respecto a
la forma de los extremos valvares. Fue así como encontramos dos tipos de
extremos: uno suavemente prolongado como los encontrados por Rivera (1969,
Lám. 13, Fig. 10) en la Bahía de Concepción, y otro donde apenas existe
una leve insinuación de prolongación. Este último tipo coincide perfectamente
con la descripción original de Cleve.

Eje apical 27-46 y; transapical 12-12.5 y; estrías 11-13 en 10 y.

Especie marina; encontrada en muestras de la zona norte, central y
sur del país siempre en escasa cantidad: Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato,
Bahía de Concepción, Estero Lenga, Río Tubul, Río Pudeto y Golfo de
Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Navicula forcipata Grev. var. densestriata A. S.
Tám. 9, Pip 9%

SCHMITH, A., Atlas, Lám. 70, Fig. 12-16 (1881). CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad.
Handl., 27(3):66 (1895).

La única diferencia con la descripción tipo de esta variedad es que en
algunos de nuestros ejemplares las estrías axiales están formadas por un
sólo punto.

Eje apical 23-42 yu; transapical 11-15 y; estrías 16-18 en 10 y.

Variedad marina, litoral; escasos frústulos observados en nuestro ma-
terial: Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Río Pudeto y Golfo de Que-
talmahue. No ha sido señalada anteriormente para Chile.

Navicula gregaria Donkin var. gregaria
Lám. 9, Fig. 95

DONKIN, A., Micr. Your., p. 10, Lám. 1, Fig. 10 (1861). HEURCK, H.,
Traité, p. 181, Lám. 3, Fig. 125 (1899).

Eje apical 18-21 y; transapical 5-6 y; estrías en número de 19-20 en
10 y.

Especie de aguas marinas y mixohalinmas; muy rara en muestras de la
zona norte y central: Bahía de Coquimbo e Isla Santa María.

E

Distribución conocida para Chile: solamente indicada para la Bahía
de Concepción (Rivera, 1969).
Navicula lengana Rivera var. lengana
Lám. 9, Fig. 96

RIVERA, P., in RIVERA, PARRA y GONZALEZ, Gayana, Bot., 23:37,
Lám. 5, Fig. 5.

Eje apical 20-27 yu; transapical 5-6.5 u; estrías 17-20 en 10 y.

Taxon de ecología aún no bien conocida; presente siempre en escasa
cantidad y en muestra de la zona central y sur del país: Bahía de Dichato,
Bahía de Concepción, Isla Santa María, Río Tubul, Río Quenuir y Golfo
Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: señalada por Rivera (Rivera, Parra
y González, 1973) para el Estero Lenga.

Navicula libellus Greg. var. libellus
Lám. 15, Figs. 179, 180

GREGORY, W., Trans. Roy. Soc. Edinb., 21:528, Lám. 14, Fig. 101 (1857).
CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., 26(2):153 (1894).

Se caracteriza por los extremos más o menos agudos de las valvas,
por los nódulos de posición subterminal, por el número de estrías y su orien-
tación que es paralela o suavemente radial. Eje apical 49-67 y; transapical 9 y;
estrías 15-19 en 10 y.

Especie marina; los tres frústulos observados provienen de muestras re-
colectadas en el Golfo de Quetalmahue. No había sido señalada todavía para
Chile.

Navicula litoris Salah var. irregulata var. nov.
Lám. 9, Fig. 97

Area centralis irregulata et longitudine valvarum superiori quam illa
varietatis litoris. Striae 17-19 in 10 p. Longitudo 19-21 y. Latitudo 9-10 y.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Arauco, Río Tubul.
DIAT-CONC 4 EPIF, Departamento de Botánica, Universidad de Concepción
(Chile), TYPUS.

Valvas rómbico-lanceoladas con extremos rostrado-redondeados. Estrías
radiales, algo más curvadas hacia los polos, 17-19 en 10 yu, formadas de nítidos

==

puntos. Area axial angosta, linear. Area central suavemente dilatada, trans-
versalmente, irregular en forma. Rafe derecha, filiforme. Largo 19-21 ps;
ancho 9-10 y.

Se diferencia de la variedad litoris por el aspecto irregular del área
central y por la mayor dimensión de la valva.

Presente en pequeño número en muestras de la zona central y sur del
país: Río Tubul y Río Quenuir.

Navicula observabilis Heiden £ Kolbe var. observabilis
Lám. 9, Fig. 98

HEIDEN £ KOLBE, Deut. Sudp. Exp., 8:631, Lám. 34, Fig. 88 (1928).

En las pocas células encontradas fue posible observar algunas varia-
ciones con respecto a la descripción original. Dice esta descripción que en
el área central stauriforme existe, a un lado de ella, dos estrías más cortas
que las restantes. En nuestros ejemplares se aprecia que algunas veces estas
estrías pueden ser casi tan largas como las restantes, más separadas unas de
otras, e incluso algunas células las presentan a ambos lados de la valva. Á veces
se presentan dos estrían cortas a un lado, y una sola al otro lado. Dice también
la descripción original que aquellas estrías que cortan a la rafe en los extremos
de la valva son transversales, perpendiculares al eje apical. En nuestro material
la orientación de estas estrías fue o transversal o radial. El número de estrías
fue también levemente diferente: señalada como de 18 en 10 ¡; nuestras cé-
lulas presentaron 19-20 (generalmente 20) en 10 ¿.

Las diferencias encontradas entre el material tipo y el nuestro pueden
corresponder perfectamente a las normales variaciones de un taxon, especial-
mente éste que es tan poco conocido.

Eje apical 17.5-25 pu; transapical 5-6 py; estrías 19-20 en 10 y.

Especie marina; siempre muy rara en muestras de la Bahía de Co-
quimbo, Isla Santa María y Río Pudeto. No había sido señalada con ante-
rioridad para Chile,

Navicula palpebralis Bréb. ex. W. Sm. var. palpebralis
Lám. 9, Fig. 101

SMITH, W., Syn. Brit. Diat., p. 50, Lám. 31, Fig. 273 (1853). HENDEY, N. L,
Fish. Inv., 4(5): 216, Lám. 34, Figs 13-19 (1964).

Eje apical 48-57 y; transapical 19-22 y; estrías 10-11 en 10 y.

Especie marina y de aguas mixohalinas; muy rara en muestras del
Estero Lenga (zona central) y Río Pudeto, Golfo de Quetalmahue (zona sur).

Hi

Distribución conocida para Chile: ha sido señalada desde Dichato a
Puyuhuapi.

Navicula punctulata W. Sm. var. punctulata
Lám. 9, Fig. 99

SMITH, W., Syn. Brit. Diat., 1:52, Lám. 16, Fig. 151 (1853).
Syn.: Navicula marina Ralís in Pritch., Hist. Infus., p. 903 (1861).

Eje apical 49-68 yu; transapical 26-33 y; estrías 11-13 en 10 yu; puntos
11 en 10 y en el centro de la valva y 17-18 en los márgenes y extremos valvares.

Especie marina y de aguas mixohalinas; escasos frústulos observados en
muestras de la zona central y sur: Estero Lenga, Río Tubul y Golfo de Que-
talmahue.

Distribución conocida para Chile: solamente señalada por Krasske,
(1939) para Calbuco,

Navicula pupula Kútz. var. rectangularis (Greg.) Grunow
Lám. 9, Fig. 100

GRUNOW, A., in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl., 17(2):45
(1880). PATRICK, R. £ REIMER, C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:497,
lám. 47, Fig. 12 (1966).

Eje apical 38 ; transapical 11 u; estrías 12 en 10 y al centro de la
valva y 21 en los extremos.

Variedad presente en aguas dulces con alto contenido mineral; un
sólo frústulo observado en muestra procedente de la Bahía de Dichato.

Distribución conocida para Chile: Posa Chico en Patagonia (Múller,
1909); Trípoli de Calama (Frenguelli, 1930); Trípoli en Isla Cailín frente a
Quellón, Trípoli en Puyehue (Frenguelli, 1935); Lago Risopatrón (Krasske,
1939), Lago General Carrera, cerca de Río Rubens, a 100 Km. de Punta Arenas,
al S.W. de Bahía Inútil, Lago Lynch, Isla Dawson, Monte Tronador (Krasske,
1949).

Navicula radiosa Kitz. var. radiosa
Lám. 10, Fig. 102

KUTZING, F. T., Bacill., p. 91, Lám. 4, Fig. 23 (1844). HEURCK, H. V.,
Traité, p. 180, Lám. 3, Fig. 112 (1899), PATRICK, R. £ REIMER, C., Monogr.
Acad. Nat. Sci. Phila., 13:509, Lám. 48, Fig. 15 (1966).

==

Eje apical 45-48 y; transapical 7-9 y; estrías 11-12 en 10 .

Especie de aguas límnicas, muy rara en nuestro material: Bahía de
Concepción y Río Quenuir.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera (1970).

Navicula rhynchocephala Kútz. var. amphiceros (Kútz.) Grunow
Lám. 10, Fig. 103

GRUNOW, A., in CLEVE £ GRUNOW,, Sv. Vet-Akad. Handl., 17(2):33 (1880).
PATRICK £ REIMER, Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13:505, Lám. 48,
Fig. 7 (1966).

Valvas anchamente lanceoladas, con extremos prolongados, redondeados.
Rafe derecha. Area axial y nódulo central fuertemente silificado. Estrías ra-
diales al centro de la valva y convergentes en los extremos, 10-12 en 10 po
Eje apical 40-58 y; transapical 9-10 y.

Se diferencia de la variedad tipo por la forma de los extremos valvares
y por el mayor número de estrías.

Variedad de aguas límnicas; muy rara en material del Estero Lenga y
Río Pudeto. Anteriormente no había sido señalada para Chile.

Navicula spectabilis Greg. var. spectabilis
Lám. 15, Fig. 181

GREGORY, W., Trans. Roy. Soc. Edinb., 21:481, Lám. 9, Fig. 10 (1857).
CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3):60 (1895). CLEVE-EULER, A.,,
Sv, Vet-Akad. Handl., IV, 4(5):107, Fig. 712 (1953).

En la determinación de este taxon coincidieron todos los caracteres con
la descripción original, a excepción de lo que se refiere a las estrías axiales.
Hendey (1964, p. 212) dice que son cortas y generalmente más cortas hacia
los nódulos polares. Cleve-Euler (1953, p. 107, Fig. 712) muestra un dibujo
donde dichas estrías son también más cortas hacia los extremos, pero ya no
son tan angostas por estar formadas de 4-5 puntos. En las fotografías de
Wornardt (1967, Fig. 191) se observa que son más anchas hacia los extremos
valvares. Esto se acerca a nuestro material, con estrías axiales anchas, no
disminuyendo hacia los extremos. Especialmente la ilustración de “Takano
(1967, Lám. 2, Fig. 8) es exacta a nuestras células.

Eje apical 34-74 y; transapical 18-42 y; estrías 10-12 en 10 y.

o

Especie marina, litoral de amplia distribución. Bastante rara en ma-
terial procedente de la Bahía de Coquimbo y Estero Lenga.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange (Petit, 1889); Trípoli
de Mejillones (Múller, 1891; Témpere £ Peragallo, 1907 y Frenguelli, 1949).

Navicula stankovici Hustedt var. chilensis var. nov.
Lám. 16, Figs. 182, 183, 184

Striae rariores quam illae varietatis stankovica, 12-14 in 10 po Longitudo,
12-43 po Latitudo 3-8.5 po

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Chiloé, Río Pudeto.
DIAT-CONC 49 EPIF, Departamento de Botánica, Universidad de Concepción
(Chile) TYPUS.

Valvas linear-lanceoladas con extremos cortos, agudo-redondeados. Rafe
derecha, filiforme. Area axial angosta, linear. Area central orbicular o sub-
orbicular. Estrías lineadas, suavemente radiales en la parte central y perpen-
diculares a la rafe en los extremos, 12-14 en 10 y. Largo 12-43 ¡; ancho 3-8.5 y.

Difiere de la variedad stankovici por el número de estrías. El área
central, en algunos ejemplares, no es perfectamente circular como la des-
cribió Hustedt para la variedad tipo.

Esta nueva variedad fue encontrada en material recolectado en las
zonas norte, central y sur del país, siempre en pequeño número: Bahía de
Coquimbo, Bahía de Dichato, Estero Lenga, Isla Santa María, Río Tubul, Río
Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Navicula tubulifera Geissler £* Gerloff var. tubulifera
GEISSLER £ GERLOFF, Nov. Hedw., 7(3-4):486, Lám. 1, Fig. 4a-d; Lám 2,
Fig. 5-6; Lám. 3, Figs. 7 a-d, 8 a-c (1964).

Valvas lanceoladas con extremos agudo-redondeados, suavemente pro-
ducidos. Rafe derecha; área axial angosta, más o menos linear; área central
dilatada transversalmente. Estrías radiales en la parte central, algo más para-
lelas y mumerosas hacia los extremos. Eje apical 19-45 y transapical 4-7.5;
estrías 12-14 en 10 y al centro y 15-16 en 10 y en los extremos.

Especie marina, litoral. Presente en todas las muestras de pelillo es-
tudiados, alcanzando una abundancia relativa de “escasa”: Bahía de Coquimbo,
Bahía de Dichato, Bahía de Concepción, Estero Lenga, Isla Santa María, Río
Tubul, Río Quenuir, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue. Hasta ahora no
había sido señalada para Chile.

<hs

Navicula viridula (Kútz.) emend. V. Heurck var avenacea
(Bréb. ex Grun.) V. Heurck
Lám. 16, Fig. 187

VAN HEURCK, H,, Syn. Diat. Belg., p. 84 ((1885). PATRICK, R. % REIMER,
C., Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13-507, Lám. 48, Fig. 10 (1966).

En el material analizado se encontró una pequeña variación del área
central, la cual tiene una forma que va desde suborbicular a orbicular. Eje
apical 46-56 y; transapical 9-10 yu; estrías 11-12 en 10 y al centro y 13-14 en
los extremos.

Variedad de aguas mixohalinas; escasos ejemplares determinados en
muestras de la Isla Santa María.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Trachyneis aspera (Ehr.) Cleve var. elliptica Hendey
Lám. 16, Fig. 188

HENDEY, N. 1., Fish. Inv., 4(5):236, Lám. 29, Figs. 11-12 (1964).

Valvas elípticas con los extremos cuneado-redondeados. Rafe algo
ondulada. Area axial angosta; área central dilatada en un ancho estauro que
no alcanza al margen valvar. Estrías como en la variedad tipo, pero algo más
numerosas, 13-16 en 10 y. Eje apical 47-49; transapical 10-25 y.

Variedad marina, epífita; presente en pequeña cantidad en muestras
recolectadas en la Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Concep-
ción, Estero Lenga, Isla Santa María, Río Tubul y Golfo de Quetalmahue.
No ha sido señalada anteriormente para Chile.

Familia CYMBELLACEAE

Cymbella aequalis Wim. Smith var. aequalis
Lám. 16, Figs. 189, 190

SMITH, W., in R. GREVILLE, Ann. Mag. Hist., 15(2):255, Lám. 9, Fig. 4

(1855). DE TONI, G., Sylloge alg., 2:359 (1891). CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad.
Handl., IV. 5(4):137, Fig. 1199 a-b (1955) como Cymbella aequalis var. grevillei,

— ¡60

Valvas lanceoladas, lado dorsal arqueado, lado ventral levemente con-
vexo o derecho; extremos obtusos, anchos. Rafe más o menos derecha, cerca
del margen ventral. Area axial angosta, dilatada en la parte central. Eje apical
35 po transapical 9 ui; estrías 12 en 10 ¡ al centro y 15 en los extremos,
radiales.

Especie de aguas dulces, muy rara en el material estudiado, presente
en una muestra del Golfo de Quetalmahue. No ha sido señalada anteriormente
para Chile.

Cymbella pusilla Grunow var. pusilla
Lám. 16, Fig. 191

GRUNOW, A., in SCHMIDT, Atlas, Lám. 9, Figs. 36-37 (1875). CLEVE, P. T.,
Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 26(2):162 (1894). VAN HEURCK, H., Traité, p. 143,
Lám. 1, Fig. 28 (1899). CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., IV. 5(4):
156, Fig. 1236 (1955).

Eje apical 45 y; transapical 8 y; estrías 17 en 10 y.

Especie de aguas dulces y salobres; uma sola célula encontrada en
material recolectado en el Río Quenuir.

Distribución conocida para Chile: Trípoli a 2 Km. de Chorrillos, Ca-
lama; Trípoli del Salar de Ollague; Trípoli del Salar de Atacama (Frenguelli,
1929); Isla Llancahue (Krasske, 1939).

Cymbella tumida (Bréb.) Van Heurck var. tumida
Lám. 16, Fig. 192

VAN HEURCK, H., Syn. Diat. Belgique, p. 64, Lám. 2, Fig. 10 (1880).
DE TONI, G., Sylloge alg., 2:366 (1891). CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl.,
n.£f., 26(2):176 (1894). VAN HEURCK, H., Traité, p. 148, lám. 1, Fig. 42
(1899). FRENGUELLI, J., Bol. Acad. Nac. Ciencias, 18:35, Lám. 1, Fig. 21
(1923).

Eje apical 56 y, transapical 17 ¡; estrías 10-11 en 10 y al centro de
la valva y 12-13 hacia los extremos.

Especie de aguas dulces; en nuestro material se encontró una sola
célula procedente de la Bahía de Dichato.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

e BN

Cymbella ventricosa Kútzing var. ventricosa
Lám. 10, Figs. 105, 106

KUTZING, F. T., Kiesel. Bacill. o. Diat., p. 80, Lám. 6, Fig. 16 (1844). CLEVE,
P. T., Sy. Vet-Akad. Handl., n.f., 26(2):168 (1894). TSUMURA, K., Your. Yoko-
hama Munic. Univ., Ser. C-12, 43:26, Lám. 8, Fig. 17 (1955). VANLANDIN-
GHAM, S., Beih. Nova Hedwigia, 14:47, Lám. 23 (1964).

Eje apical 21-29 ¡; transapical 4-9 y; estrías del lado dorsal 12-13 en
10 y al centro y 15-16 en los extremos; estrías lado ventral 11-12 al centro,
15-16 en los extremos.

Especie de aguas dulces, litoral, epífita, cosmopolita.

Presente siempre en escasa cantidad en la zona norte, central y sur:
Bahía de Coquimbo, Isla Santa María y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Amphora bongrainii M. Perag. var. bongrainii
Lám. 10, Fig. 107

M. PERAGALLO, Deux. Exp. Ant. Fr., p. 60, Lám. 2, Fig. 22 (1921). FREN-
GUELLI, J., Rev. Mus. La Plata, Bot., 1:301, Lám. 2, Fig. 13 (1936).

Característica por la forma de los extremos valvares que son promi-
nentes; lado dorsal con una gran área axial; área central redondeada. Largo
56 u; ancho 23 y; estrías 13 en 10 y.

En el único ejemplar encontrado no fue posible distinguir las fuertes
granulaciones de las estrías que aparecen en la descripción de Peragallo, coin-
cidiendo por lo tanto con la discusión e ilustración que Peragallo (loc. cit.) da
para esta especie.

Especie marina de ecología aún poco conocida. Determinada en una
muestra recolectada en el Golfo de Quetalmahue (zona sur). No ha sido
señalada antes para Chile.

Amphora exigua Gregory var exigua
Lám. 10, Fig. 108

GREGORY, W., Trans. Roy. Roy. Edinb., 21:514, Lám. 14, Fig. 75 (1857).
CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad. Handl., n.f., 27(3)123 (1895). PERAGALLO et
PERAGALLO, Diat. Mar. France, p. 230, Lám. 50, Figs. 30-31 (1897-1908).
CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., IV. 4(5):99, Fig. 686e (1953).
HENDEY, N. I., Fish. Inv., 4(5):266 (1964).

—f2

Valvas lanceoladas con extremos rostrados, truncados; lado dorsal con-
vexo, lado ventral derecho a suavemente cóncavo, algo dilatado en la parte
central. Rafe filiforme, cerca del lado ventral. Estrías finas, no punteadas,
18 en 10 ¡ al centro, algo más numerosas hacia los extremos. Eje apical
27-40 y, transapical 56 y.

Taxon de aguas marinas y mixohalinas, encontrada en escasa cantidad
en muestras de la zona central y sur: Bahía de Concepción, Estero Lenga,
Río Tubul y Río Pudeto. No ha sido señalada anteriormente para Chile.

Amphora lineolata Ehr. var. lineolata
Lám. 16, Figs. 193, 194

EHRENBERG, C. G., Infus., Lám. 14, Fig. 4 (1838). HEURCK, H. V., Syn.
Diat. Belg., p. 57, Lám. 1, Fig 23 (1880-85). CLEVE, P. T., Sv. Vet-Akad.
Handl., n.f., 27(3):126 (1895).

Largo 47-67 y; ancho 22-31 y; estrías 19-21 en 10 pu; líneas longitudi-
nales 9-10 en 10 y.

Especie de aguas mixohalinas; presente en escaso número en muestras
de la Bahía de Coquimbo (zona norte).

Distribución conocida para Chile: Calbuco, orilla de fiordo (Krasske,

1939).

Amphora ostrearia Brébisson var. ostrearia
Lám. 16, Fig. 195

BREBISSON, A. de, in KUTZING, F. T., Species Alg., p. 94 (1849). VAN
HEURCK, H., Traité, p. 139, Lám. 1, Fig. 1 (1899). PERAGALLO et PERA-
GALLO, Diat. Mar. France, p. 219, Lám. 49, Fig. 13 (1897-1908). HENDEY,
N. L, Fish, Inv., 4(5):266, Lám. 38, Fig. 5 (1964).

Se caracteriza porque el borde externo de la valva es casi recto; con
extremos truncados; estauro angosto, pero nítido y una serie de líneas lon-
gitudinales en número de 6-7 en 10 y. Largo 81 ,; ancho 36 ,.

Especie marina; se encontró una sola célula en material recolectado
en el Golfo de Quetalmahue (zona sur). No había sido señalada anteriormente

para Chile.

7

Gomphonema constrictum Ehr. var. constrictum

EHRENBERG, C. G., Mb. Berlin Akad., p. 63 (1830), SCHONFELDT H. V.,
in PASCHER, A., Siisswass., 10:119, Fig. 260 (1913).

Eje apical 51 yu; transapical 11 ¡; estrías 12-13 en 10 y.

Especie de aguas dulces, muy rara en el material analizado, presente
sólo en la Bahía de Dichato.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera (1969).

Gomphonema kamtschaticum Grunow var. kamischaticum

Lám. 10, Fig. 109

GRUNOW, A., Casp. Sea, p. 109(12), Lám. 2, Fig. 4 (1878). CLEVE, P. T.,
Sv. Vet-Akad. Handl., 26(2):188 (1894). HENDEY, N. 1, Fish. Inv., 4(5):260
(1964).

Eje apical 28-55 y; transapical 5.5-9 ¡; estrías 13-15 en 10 y al centro
y 19-22 en los extremos.

Especie marina, epífita; las pocas células estudiadas provienen de
muestras recolectadas en la Bahía de Concepción, Estero Lenga (zona central)
y Río Quenuir y Río Pudeto (zona sur).

Distribución conocida para Chile: Calbuco, orilla de fiordo (Krasske,
1939).

Gomphonema montanum Schumann var. montanum
Lám. 10, Fig. 110

SCHUMANN, J., p. 67, Lám. 3, Fig. 35 (1867). HEURCK, H. V., Traité,
p. 271, Lám. 7, Fig. 303 (1899).

Valvas anchas en la parte central angostándose hacia los extremos, ge-
neralmente los márgenes tienen una forma tri-ondulada. Rafe derecha. Area
axial ancha. Estrías más o menos radiales, a veces algo paralelas en la parte
inferior; a un lado de la valva, en el área central, existe una estría más corta
que las restantes. Eje apical 22-24 y; transapical 6-7 ¡; estrías 12-13 en 10 p.

Especie de agua dulce, rara en muestras recolectadas en la zona central:
Isla Santa María y Río Tubul.

Distribución conocida para Chile: solamente señalada para un trípoli
situado a 2 Km. de Chorrillos, en Calama (Frenguelli, 1929).

164

Gomphonema parvulum Kiitz. var. parvulum

Lám. 10, Fig. 111

KUTZING, F. T., Sp. Alg., p. 65 (1849). WALLACE, J. % PATRICK, R.,
Butler Univ. Bot. Studies, 9:229, Figs. 2-19, 25-29 (1950).
Eje apical 22 po transapical 5.5 ps estrías 16 en 10 po

Especie indicadora de aguas contaminadas, epífita obligada. Una sola
célula observada en muestras provenientes del Estero Lenga.
Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Gomphonema pseudoexiguum Simonsen var. pseudoexiguum
Lám. 10, Figs. 112, 113

SIMONSEN, R., Kieler Meeresforsch., 15(1):83, Lám. 12, Figs. 8-9 (1959).
TAKANO, H., Bull. Tokai Reg. Fish. Res. Lab., 36:2, Lám. 1, Figs. 7 y 13
(1963).

Eje apical 9-24 ju transapical 2-3 po estrías 18-21 en 10 pl

Especie marina, epífita. Presente en todas las muestras estudiadas de
pelillo con una abundancia relativa de “muy abundante”; es otro de los taxa
más característicos de la flora diatomológica epífita del pelillo: Bahía de
Coquimbo, Bahía de Dichato, Bahía de Concepción, Estero Lenga, Isla Santa
María, Río Tubul, Río Quenuir, Río Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: señalada solamente para el Estero
Lenga (Rivera, Parra y González, 1973).

Familia EPITHEMIACEAE
Epithemia argus (Ehr.) Kútz. var. argus
Lám. 10, Fig. 114

KUTZING, F. T., p. 35, Lám. 29, Figs. 55-56 (1844). VAN HEURCK, H.,
Traité, p. 296, Lám. 9, Fig. 355 (1899).

Eje apical 32-37 y; ancho 11-12 po costillas 3-4 en 10 py; estrías 18-19
en 10 po

iS

Especie de aguas dulces, principalmente estancadas, cosmopolita. Los
pocos frústulos observados provienen de muestras recolectadas en la Bahía
de Coquimbo y en el Río Pudeto.

Distribución conocida para Chile: Posa entre Kark y Tweedie; Arroyo
junto a Laguna Blanca (Múller, 1909); Calbuco (Krasske, 1939); Isla Dawson;
a 67 Km. de Punta Arenas; Lago O'Higgins; Lago General Carrera; Monte
Tronador (Krasske, 1949), Laguna TII próxima a la Cordillera de Paine (Asprey
et “al., 1964).

Epithemia zebra (Ehr.) Kiitzing var. zebra

KUTZING, F. T., Bacill. p. 34, Lám. 5, Fig. 12 (1844). VAN HEURCK, H.,
Traité, p. 296, Lám. 9, Fig. 357 (1899). PERAGALLO et PERAGALLO,
Diat. Mar. France, p. 305, Lám. 77, Figs. 25-31 (1897-1908).

Eje apical 62 y; transapical 11 ¡.; costillas 4 en 10 y; estrías 12 en 10 y.

Especie de aguas dulces, cosmopolita; un sólo frústulo observado pro-
cedente de la Bahía de Concepción.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González, 1973.

Rhopalodia gibberula (Ehr.) O. Mill. var. gibberula
Lám. 10, Fig. 115

MULLER, O., Eng. Bot. Jahrb., 22:58 (1895). HUSTEDT, F., Siissw. Flora
Mitteleur., p. 391, Fig. 742 (1930).

Largo 20-36 y; ancho 7.5-10.5 y; costillas 46 en 10 ;.

Especie de aguas límnicas; los escasos frústulos observados provienen
de muestras recolectadas en el Río Tubul y en el Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Trípoli cerca de Chorrillos, Trípoli
del Salar de Ollagie (Frenguelli, 1929); Calbuco, Río Puelo, Lago Risopatrón,
Afluente del Lago Risopatrón, Puyuhuapi, Termas de Puyehue, Lago Ru-
panco, Isla Llancahue (Krasske, 1939); Monte Tronador (Krasske, 1949).

6

Familia NITZSCHIAE

Hantzschia amphioxys (Ehr.) Grun. var. amphioxys
Lám. 11, Fig. 116

GRUNOW, A., in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl.,, 17(2):103
(1880). HUSTEDT, F., in SCHMITH et al., Lám. 329, Figs. 11-12, 15-20 (1921).

Eje apical 61-65 ¡; transapical 5-6 y; estrías 14-15 en 10 yu; puntos de
la quilla 8-9 en 10 y.

Especie de aguas dulces y salobres, indicadora de aguas contaminadas.
Presente siempre en escasa cantidad y recolectada solamente en el Estero
Lenga (zona central).

Distribución conocida para Chile: Arroyo junto a Laguna Blanca en
Patagonia, Río Tres Pasos (Miller, 1909); Trípoli de San Pedro de Atacama
(Frenguelli, 1934); en una calle de San Vicente, Termas de Puyehue, Lago
Rupanco, Calbuco, Río Puelo, Fiordo de Reloncaví, Lago Risopatrón, afluente
del Lago Risopatrón, Río Pascua, Puyuhuapi, Bosque de lluvias del Sur de
Chile (Krasske, 1939); Río Rubens; a 100 y 67 Km. de Punta Arenas, cerca
de Bahía Inútil, Río Allerce, Lago General Carrera (Krasske, 1949); Santiago
y alrededores (Negrete, 1964).

Nitzschia acicularis (Kiitz.) W. Sm. var. acicularis
Lám. 11, Fig. 117

SMITH, W., Syn. Brit. Diat., p. 43, Lám. 15, Fig. 122 (1853). GRUNOW, A.,
Verh. Zoo. Bot. Gesell., 12:582 (1862) HUSTEDT. F., Siissw. Flora Mitteleur.,
p. 423, Fig. 821 (1930).

Eje apical 60 ¡; transapical 4 u; puntos de la quilla 20 en 10 p.

Especie de aguas dulces; muy rara en material recolectado en la Isla
Santa María.

Distribución conocida para Chile: Provincia de Santiago (Espinosa, 1923
y Negrete, 1964); Río Tres Puentes en Punta Arenas (Frenguelli, 1923); Lago
Puyehue (Krasske, 1939) Lago Calafquén, Villarrica (Thomasson, 1963).

==

Nitzschia acuminata (W. Sm.) Grun. var. densestriata var. nov.
Lám. 11, Fig. 118

Striae crassiores quam illae varietatis acuminata, 25-26 in 10 1. Puncta
carinae distincta, 14 in 10 y. Latitudo 25-38 y. Longitudo 6-6.5 p.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Chiloé, Río Pudeto.
DIAT-CONC 48 EPIF, Departamento de Botánica, Universidad de Concep-
ción (Chile), TYPUS.

La diferencia con la variedad tipo radica en el mayor múmero de
estrías, 25-26 en 10 ¡.. Las demás características, tales como el tamaño y forma
del espacio hialino interno de la valva, y la forma de esta última, concuerdan
completamente con el taxon de Grunow.

La variedad densestriata fue encontrada exclusivamente en una muestra
de primavera recolectada en el Río Pudeto.

Nitzschia angularis W. Sm. var. angularis
Lám. 11, Fig. 119

SMITH, W., Syn. Brit. Diat., 1:40, Lám. 13, Fig. 117 (1853). TEIXEIRA
KUTNER, Bol. Inst. Ocean., 11(3):57, Lám. 1, Fig. 3 (1961). RIVERA, P.,
Gayana, Bot., 18:75, Lám. 15, Fig. 7 (1969).

Eje apical 60-137 3 transapical 10-12 ¡,; puntos de la quilla 4-6 en 10 y.

Especie marina, nerítica, cosmopolita; presente en escaso número en
muestras de la zona central y sur de Chile: Bahía de Concepción, Estero
Lenga, Río Quenuir y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: se la ha señalado desde la Bahía
de Dichato hasta Calbuco.

Nitzschia apiculata (Greg.) Grun. var. apiculata
Lám. 11, Fig. 120

GRUNOW, A. in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl., 17(2):73
(1880). HUSTEDT, F., Siissw. Flora Mitteleur., p. 401, Fig. 765 (1930).

Eje apical 31-33 ¡; transapical 6-7 u; estrías 17-18 en 10 y.

Especie tolerante a diferentes condiciones ecológicas, encontrada en
aguas marinas, dulces y salobres. Las escasas células encontradas en nuestro
material provienen del Río Tubul.

0

Distribución conocida para Chile: Trípoli del Salar de Atacama (Fren-
guelli, 1929); Calbuco (Krasske, 1939).

Nitzschia constricta Ralfs f. parva Van Heurck
Lám. 16, Fig. 198

VAN HEURCK, H., Syn. Diat. Belg., p. 173, Lám. 58, Fig. 8 (1880-85). Ibid,,
Traité, p. 386, Lám. 15, Fig. 502 (1899).

Difiere de la variedad tipo principalmente por su reducido tamaño.
Largo 16-22 y; ancho 6-8 y; estrías 18-20 en 10 y.

Taxón de aguas marinas, epifito. Muy rara en muestras de la zona
norte y sur de Chile: Bahía de Coquimbo, Río Pudeto y Golfo de Quetal-
mahue. No había sido señalada para Chile.

Nitzschia dissipata (Kitz.) Grun. var. dissipata
Lám. 11, Fig. 121

GRUNOW, A., Verh. Zool. Bot. Ges. Wien, 12:561 (1862). HUSTEDT. F,,
Siússw. Mitteleur., p. 412, Fig. 789 (1930).

Eje apical 17-33 y; transapical 3-5 yu; puntos de la quilla 7-9 en 10 y.

Especie de aguas límnicas; determinada en muestras del norte, centro
y sur del país, siempre en escaso número: Bahía de Coquimbo, Bahía de
Concepción, Isla Santa María y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Vea Rivera, Parra y González. 1973.

Nitzschia fonticola Grun. var. fonticola
Lám. 11, Fig. 122

GRUNOW, A., in VAN HEURCK, H., Syn. Diat. Belg., Lám. 69, Figs. 15-20
(1880-85). HUSTEDT, F., Siissw. Flora Mitteleur., p. 415, Fig. 800 (1930).

Eje apical 10-17 y; transapical 2-4 yu; estrías 23-26 en 10 y; puntos
de la carena 14-16 en 10 ,.

Especie de aguas dulces; presente siempre en pequeño número en
muestras de la zona norte, central y sur: Bahía de Coquimbo, Río Tubul, Río
Pudeto y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Lago Puyehue, Lago Llanquihue,
Calbuco (Krasske, 1939); Isla Dawson, Cabo Troward (Krasske, 1949).

mee

Nitzschia obtusa W. Sm. var. obtusa
Lám. 16, Figs. 196, 197

SMITH, W., Syn. Brit. Diat., 1:39, Lám. 13, Fig. 109 (1853). CLEVE e
GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl., 17(2):91 (1880). HUSTEDT, F., Sússw.
Mitteleur., p. 422, Fig. 817 a (1930).

Eje apical 86.1 ¡; transapical 7.4 ; puntos carenales 6-8 en 10 p.

Especie de aguas marinas y mixohalinas; un frústulo observado en
muestra del Río Tubul.

Distribución conocida para Chile: Calbuco (Krasske, 1939); Lago Fag-
nano (Thomasson, 1955); Estero Lenga (Rivera, Parra y González, 1973).

Nitzschia obtusa var. scalpelliformis Grunow
Lám. 11, Figs. 123, 124

GRUNOW, A., in CLEVE £* GRUNOW, Sv. Vet-Akad Handl., 17(2):92 (1880).
VAN HEURCK, Traité, p. 397, Lám. 16, Fig. 538 (1899).

Eje apical 54-59 yu; transapical 5-7 p; estrías 30-32 en 10 ¡; puntos
carenales 8 en 10 y.

Variedad de aguas dulces; rara en material del Estero Lenga y Golfo
de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Calbuco (Krasske, 1939); Puyuhuapi
(Krasske, 1941).

Nitzschia paradoxa (Gmelin) Grun. var. paradoxa
Lám. 11, Figs. 125, 126

GRUNOW, A., in CLEVE £ GRUNOW, Sv. Vet-Akad. Handl., 17(2):85 (1880).
CUPP, E. E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr., 5(1):206, Fig. 159 (1943).

Eje apical 62-88 ¡; transapical 6-7 y; estrías 19-22 en 10 yu; puntos ca-
renales 7-9 en 10 y.

Amplia tolerancia a diferentes condiciones ecológicas, encontrada en
aguas dulces, salobres y marinas. Presente siempre en escaso número en
muestras recolectadas en la Bahía de Coquimbo, Bahía de Dichato, Isla Santa
María y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: señalada desde la Bahía de Dichato
hasta Puyuhuapi.

==

Nitzschia parvula Lewis var. parvula
Lám. 11, Fig. 127

LEWIS, F., in SCHMITH, A., Atlas, Lám. 336, Figs. 12-19 (1874 ............ ).
HUSTEDT, F., Sissw. Mitteleur, p. 421, Fig. 816 (1930).

Taxon muy variable tanto en la forma de los extremos valvares como
en el grado de constricción.

Eje apical 28-30 yu; transapical 5-5.5 y; puntos-quilla 8-9 en 10 y.

Especie de aguas dulces y mixohalinas, especialmente abundante en la
desembocadura de ríos, cosmopolita. Los escasos frústulos encontrados pro-
vienen del Río Tubul.

Nitzschia sigma W. Sm. var. sigma
Lám. 11, Fig. 128

SMITH, W., Syn. Brit. Diat., 1:39, Lám. 13, Fig. 108 (1853). HEURCK, H. V.,
Traité, p. 396, Lám. 16, Fig. 531 (1899). CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad.
Handl., 3(3):74, Fig. 1470 a-b (1952).

Eje apical 84 y; transapical 6.5 yu; estrías 29-30 en 10 ¡; puntos de la
quilla 9-10 en 10 y.

Especie marina y de aguas mixohalinas, epífita, cosmopolita. Sola-
mente encontrada en el Golfo de Quetalmahue, muy rara.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange (Petit, 1889); Río
Cullén (Cleve, 1900); Calbuco, Isla Llancahue (Krasske, 1939); Puyuhuapi
(Krasske, 1941).

Familia SURIRELLACEAE

Campylodiscus fastuosus Ehrenberg var. fastuosus
Lám. 16, Fig. 199

EHRENBERG, C. G., Ber. Akad. Wiss. Berlin, p. 361 (1845). HENDEY, N. 1,
Your. Roy. Micr. Soc., 71:78, Lám. 17, Figs. 1-6 (1951). Ibid., Fish. Inv., 4(5):
290, Lám. 40, Fig. 13 (1964). PERAGALLO et PERAGALLO, Diat. Mar.
France, p. 247, Lám. 57, Figs. 4-9 (1897-1908) como Campylodiscus thuretii
Brébisson.

= He

Mínimas diferencias existen entre nuestro material y el material tipo.
Peragallo (loc. cit., p. 247) dice al respecto: “T'rés répandu et trés variable
comme taille et comme aspect”. El contorno de nuestras células y el número
de costillas concuerdan con Hendey (loc. cit., p. 290) y el aspecto de la zona
central con Peragallo (loc. cit.).

Diámetro valvar, 19-40 y; costillas 3 en 10 y; estrías en la parte central
9-13 "en T0" y

Especie marina, encontrada en la zona norte y sur, siempre en muy
bajo número: Bahía de Coquimbo y Golfo de Quetalmahue.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Dichato, Bahía de San
Vicente, Calbuco, Puyuhuapi (Krasske, 1941).

Surirella ovalis Breb. var. salina (W. Sm.) Van Heurck
Lám. 11, Fig. 129

VAN HEURCK, H., Treat., p. 373, Lám. 13, Fig. 589 (1896). HENDEY, Nod
Fish. Inv., 4(5):287, Lám. 40, Fig. 11, 1964, como Surirella salina W. Sm.

Se encontró una sola célula de esta variedad con un ligero aumento
en el número de costillas: 7-8 en 10 py. Autores como V. Heurck (loc. cit.)
indica 5-6 costillas en 10 y; Cleve-Euler (1952, p. 120) señala 6-7 en 10 po
Hendey (loc. cit.) indica 5-6 en 10 ¡. El resto de las características de nuestro
ejemplar concuerdan perfectamente con el material tipo. Eje apical 24 p;
transapical 10 y.

Variedad de aguas mixohalinas; presente en muestra de la Bahía de
Coquimbo. No ha sido señalada anteriormente para Chile.

Surirella ovata Kútz. var. smithi Cleve-Euler
Lám. 11, Fig. 130

CLEVE-EULER, A., Sv. Vet-Akad. Handl., 3(3):123, Fig. 1566 m (1952).
RIVERA, P. in RIVERA, PARRA y GONZALEZ, Gayana, Bot., 23:83, Lám. 7,
Fig. 22 (1973).

Eje apical 28-37 y; transapical 6-7.5 yu; costillas 6-8 en 10 y.

Variedad de aguas límnicas; presente en escasa cantidad en muestras
de la zona central: Bahía de Dichato, Estero Lenga e Isla Santa María.

Distribución conocida para Chile: Estero Lenga (Rivera, Parra y Gon-
zález, 1973).

00 ds

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ES

128

740

y
7)

dá O
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A

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cal —ñierrccrra——————decrconnó—————— HR y

ESCALA

1:4000,000

Mara I.— Lugares de recolección.

bs

TABLA 1.— Distribución de los taxa en el material estudiado.

Estación 1: Bahía de Coquimbo
A. 10-VII-68
B. 10-X-68
C. 21-I11-69
D. 12-V-69

Estación 2: Bahía de Dichato
A. 16-VIII-68
B. —5-XII-68
C. 18-IV-69
D. 30-VII-69

Estación 3: Bahía de Concepción
A. 13-1X-68
B. —5-XII-68
C. 17-IV-69
D. 14-VIII-69

Estación 4: Estero Lenga
A. 22-VIII-68
B. 8-XII-68
C. 18-11-69
D. —2-VI-69

Estación 5: Isla Santa María
A. 19-VIIL-68
B. 21-XII-68
C. 22-IV-69
D. 2-VII-69

Estación 6: Río Tubul
A. 19-VIII-68
B. 17-X-68
C. 24-V-69
D. 22-VIT-69

Estación 7: Río Quenuir
A. 27-VIII-68
B. 17-XII-68
C. 9-I1-69
D. 5-V-69

Estación 8: Golfo de Quetalmahue
A. 29-VIII-68
B. —1-XI-68
C. 10-11-69
D. 11-VIL-69

Estación 9: Río Pudeto
A. 29-VIII-68
B. 14-XI1-68
C. 10-11-69
D. 3-V-69

pa pl
dl Pell Pad la dea 1 mA ñ " als

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E NA, qn: Per AA
A ¡ y OR »

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pe 8 Flo br

Tabla 1—

T MANSAR 0 7 8 9
DIA DNA BAEDA OD
Achnanthes bi e | La
] e | |
h h + | +
la | zo
ke l;
e r( + |
sl ul |
Actinoptychus -
Amphora bon +
E exig + +
6 line
bi ostr | Ele
Asterionella fi AE
Auliscus sculp 4d
Biddulphia at +
. at == SAP
$ la |
d la 17
Caloneis oreg 6 |
Campylodiscut | es |
Ceratoneis ari
de ari | 2
E ari |
Chaetoceros d | |
ñ r
Cocconeis cal: | | |
pe COS | E A
d 0 |
a dir ul E
” diy + | + + + -
»” for ++ + - “
bi md | es
y no! | |
» O + CE + + +
” pse | +++

A A e E

Tabla 1 (Continuación)

| | |
EN 1 2 | A A 7 8 9
ArcDancDlancolancparcpancolarncDlancoanco
| |
a Cocconeis scutellum v. ornata + + | | ae
pe scutellum v. scutellum + +¿<+ + +++ + + | A a e A E TS | + + +F +A ++ ¡[+ +++
e scutellum y. stauroneiformis A ES ER e A A ASE A A E E
2 thumensis v. thumensis + + + | ar
Coscinodiscus curvatulus v, curvatulus | | +
e excentricus y. excentricus | + |+ |
y granulosus v. granulosus + +
Ne janischii v. janischii | a |
> perforatus v. cellulosa |
4 radiatus v. radiatus + |
24 subtilis v. subtilis | |
Cyclotella meneghiniana v. meneghiniana +
dd operculata v. operculata |
Cymbella aequalis v. aequalis
Y pusilla v. pusilla |
pe tumida v, tumida +
» y ventricosa v, ventricosa + | |
Diatoma elongatum v. tenuis Í. minus + | + + + |
E hiemale y, quadratum | + + |
Dimerogramma minor v. minor + =P +

Diploneis didyma v. didyma

incurvata v, incurvata

papula v. constricta
e subovalis v. subovalis
Entopyla australis v. australis [+ + + +
Epithemia argus v. argus +

él zebra v. zebra + |
Eunotia exigua v. tridentula +

2 tenella v, tenella
Frustulia vulgaris v. vulgaris |
Gomphonema constrictum v. constrictum ar

kamischaticum v. kamtschaticum + +

montanum y, montanum |
parvulum v, parvulum

pseudoexiguum v. pseudoexiguum | + + 1 | >
y

Tabla 1 (Continuación)

|

| | 8 | 9
MATO DA BIC DA BCD
| +
E E A ad
E A E 0 E e
+
+ +
+ +
Í + +
5
+
e
E e +
.
—
+ E +
=5 == os
| ES
| +
+ Es
|
+ dE + + +

Tabla 1 (Continuación)

|

TA XA 1 2 A A A A | 9
AB GADMA BECA ABCD|ABCDÍABCDIABCO A BUG DI ATB GDA ARBMGD
el Cocconeis scutellum v. ornata + + | | mE
scutellum v. scutellum ++ ++++ EHE[|EHE EF] ERE IEEE RIERA ER + + ++ ++
de scutellum v. stauroneiformis +++ SER Co E E E E AA
se thumensis v. thumensis ++ + | + + +++ +
Coscinodiscus curvatulus v. curvatulus | + 2. +
pe excentricus v. excentricus + + ++ + + az =J
y granulosus v. granulosus + +
$% janischii v. janischii |
perforatus v. cellulosa | |+
ts radiatus v. radiatus + | | + +
te subtilis y. subtilis | E | |
Cyclotella meneghiniana v. meneghiniana + | + |
dde operculata v. operculata +
Cymbella aequalis v. aequalis | +
Se pusilla y. pusilla | | +
» tumida v, tumida + |
ma ye ventricosa y, ventricosa + | | + | | +
Diatoma elongatum v. tenuis Í, minus + + + + ++ + | + + + | |
y hiemale y. quadratum E | | | |
Dimerogramma minor v. minor + ik + | | |
Diploneis didyma v. didyma 57 E | [5 | + + + + +
4 incurvata y. incurvata + | | a
ai papula v, constricta | AE
4 subovalis v. subovalis | lo + + + + + | + ¡55%
Entopyla australis v. australis + + e + Am Rp + + AE + | + +
Epithemia argus v. argus + | | | as
pr zebra v. zebra + | |
Eunotia exigua v. tridentula es | |
ES tenella y. tenella | +
Frustulia vulgaris v. vulgaris + |
Gomphonema constrictum v. constrictum | aj | |
¡E kamtschaticum v. kamtschaticum | ES + + +
23 montanum v, montanum + +
$ parvulum v, parvulum | 3 | |
E pseudoexiguum v. pseudoexiguum | E E | + EE + + + Air ++ e iS

TAX A

Grammatopho

”

Gyrosigma ten
Hantzschia a
Hyalodiscus ke
ki sco
Lichmophora dá

Mastogloia pu
Melosira gran
italid
juerg
num
sulca
varia
Navicula accoK
> decus

Y dicep
exig

$ finm
forci
grega
lenga
dd libel
litor
obse
palp
pund
pup
radid
rhyn
spect
stank
me tub
virid

7

Tabla

8

ANNA O

+

+

1 (Continuación)

9
DIA D
++ +
+l+ +++
AE: +
|
|
+ +
+ +
|
|
|
=
|
|
+
+ +
| ar
|
155
+ +
—
+ +++

Tabla

1 (Continuación)

DARA 1 | 2 3 4 5 6 | 7 8 9
AB CID PATBG DA BC DA BG DIA BCDIABOCGD|ABG DA BG DA Bic D
Grammatophora angulosa v. angulosa | 43 va +| | + + ++ +++ ++ | + a ae
S da arcuata v. arcuata + (E Se
> marina y. marina e, | + El+ +++] + + + + + | E | + |
4 oceanica v. oceanica + + + rs | 4 | + + Le + |
Gyrosigma tenuissimum v. angustissima | añ |
Hantzschia amphioxys v. amphioxys | + | |
Hyalodiscus kerguelensis v. kerguelensis | FE +H++lit+ |+ + | | |
Ad scoticus y. scoticus | | | | EJE | E A ES +
Lichmophora abbreviata v. abbreviata eS + + + + | + | + | $
y flabellata y. fMabellata +] ue |
Mastogloia pumila y. pumila | Ed + |
Melosira granulata v. granulata sE | + |
E italica v. italica | | ES | |
y juergensii v. juergensii + E | | + + (EA
nummuloides v. nummuloides | | | STA Es E
pa sulcata v. sulcata | | | + |
de varians v. varians | | e | | |
» accomoda v. accomoda | | | ? | y
de, decussis v. decussis q | |
EN dicephala v. elginensis | | | 1 |
exigua y. exigua | s e |
il finmarchica v. finmarchica +++ ANTE +|+ q +4 o 4 +
forcipata v. densestriata + + H | En ya a
ed gregaria v. gregaria + + |
PR lengana v. lengana | + | + | + + +++ + de
ps libellus v. libellus | | nh
dy litoris v. irregulata var. nov. | + +
da observabilis v. observabilis + | Ge +
palpebralis v. palpebralis | + | | + +
3 E punctulata y. punctulata + + + +
E pupula v. rectangularis + |
Ú radiosa v. radiosa + +
e rhynchocephala v. amphiceros + + E
- El spectabilis v. spectabilis + | +
e stankovici v. chilensis var. nov. + + + + +]| + | + an
il tubulifera v. tubulifera + + + +| + +|+ + + + + + leas + 4 ++ +
e viridula v. avenacea | dia |

Nitzschia aciculd
acumi
angul:
apiculd
constri
dissipal
fontic
obtus:
obtusa
parada
parvul
sigma
Opephora linea
$ marir
Pinnularia balti
es diver
virid
Plagiogramma i
Pleurosigma int
e nav
nic
no
Rhabdonema ar
Rhoicosphenia «
Rhopalodia gibl
Skeletonema cos
Stauroneis ancej
Y desid
dl lappa
Surirella ovalis
a ovata
Synedra fascicul
% fascicul
fulgens
gaillon
ulna v.
ulna v.
Trachyneis aspe
Trachysphenia 4

”

7
PA BO D

+++

+++

Tabla 1

++

(Continuación)
9
¡A BCD
—
+
LS
|
+ + + +
E
|
+ +
+
++<++
+ + e
+ +++

Tabla 1 (Continuación)

A! A 4 A A PA O MIÉ:
FATBAC DAFATD OC DINA CB-CD JA BC DIMA BG DA BODpABGDIABCDIABaD
Nitzschia acicularis v. acicularis | | í | |
acuminata v. densestriata var. nov. |
angularis v. angularis + si |
apiculata v. apiculata ' |
constricta £. parva + +| | |
1]
|
|
|
|
|

+ o]
| a

dissipata v. dissipata | + | pa e
fonticola v. fonticola aa
obtusa v. obtusa
obtusa v. scalpelliformis
paradoxa v. paradoxa + + +
parvula v. parvula |
sigma v. sigma
Opephora lineata v. lineata | + | |
ES marina v. marina 25 des E SN EE +++ + + a dde, | E EA
Pinnularia baltica v. baltica |
h divergens v. divergens | |
viridis v. minor | | + |
|
|

Plagiogramma interruptum v. interruptum |
Pleurosigma intermedium v. intermedium |
E naviculaceum v. naviculaceum | | |
nicobaricum v. nicobaricum | |
normanii v. normanii | | le
Rhabdonema arcuatum v. arcuatum | A O |
Rhoicosphenia curvata v. curvata | |
Rhopalodia gibberula v. gibberula | |
Skeletonema costatum v. costatum + +| + |
Stauroneis anceps v. anceps | + |
|

En

En
e
+
Ye
e
+
+

++

«0 desiderata v. desiderata | 8
lapponica v. lapponica | +
Surirella ovalis v. salina

cl ovata v. smithii

++

Synedra fasciculata v. fasciculata | E 5 sy A
fasciculata v. truncata |
fulgens v. mediterranea | + | | 3
gaillonii v. densestriata var. nov. |
ulna v. oxyrhynchus |
ulna v. ulna '
Trachyneis aspera v. elliptica

Trachysphenia australis v. aucklandica

G"AMINAS

A | indica 10 micrones.

:

LAMINA 1.

Fig. 1.— Melosira granulata (Ehr.) Ralfs var. granulata.

[eje]

Fig. 2.— Melosira juergensii Agardh var. juergensil.

Fig. 3.— Melosira nummuloides (Dillw.) Ag. var. nummuloides.
Fig. 4.— Melosira sulcata (Ehr.) Kútz. var. sulcata.

Fig. 4 B.— Melosira varians Agardh var. varians.

Fig. 5.— Coscinodiscus excentricus Ehr. var. excentricus.

Figs. 6-7-8.— Coscinodiscus janischii A. Sch. var. janischii. Fig. 6: parte central
de la valva. Fig. 7: areolas entre el centro y el borde valvar. Fig. 8:
borde de la valva.

e a

LAMINA

—8l —

LAMINA 2.

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

9.—Coscinodiscus perforatus Ehr. var. cellulosa Grunow.
10.— Coscinodiscus radiatus Ehr. var. radiatus.

11.— Cyclotella meneghiniana Kutz. var. meneghiniana.
11.— Cyclotella meneghiniana Kutz. var. meneghiniana.
12,— Auliscus sculptus (Wm. Smith) Ralfs var. sculptus.

13.— Chaetoceros radicans Schútt var. radicans.

14.— Biddulphia aurita (Lyngbye) Brébisson et Godey var.

82 =

aurita.

LA MINA 2

AO

— 8

LAMINA 3.

Fig. 15.— Biddulphia aurita var. obtusa (Kútz.) Hustedt.
Fig. 16.— Biddulphia longicruris Grev. var. hyalina (Schr.) Cupp.
Fig. 17.— Biddulphia longicruris Grev. var. longicruris.

Figs. 18-19-20.— Grammatophora angulosa Ehr. var. angulosa. Figs. 18 y 19:
vistas conectivales. Fig. 20: vista valvar.

Fig. 21.— Chaetoceros decipiens Cleve var. decipiens.

— BAD

Dm
AAA

A

===

E

LAMINA 4.

Fig. 22.— Grammatophora arcuata Ehr. var. arcuata.
Fig. 23.— Grammatophora marina (Lyngbye) Kútz. var. marina.

Figs. 24-25.— Lichmophora abbreviata Ag. var. abbreviata. Fig. 24: vista valvar.
Fig. 25: vista conectival.

Figs. 26-27.— Lichmophora flabellata (Grev.) Ag. var. flabellata. Fig. 27: detalle
de un extremo de la valva.

Figs. 28-29-30.— Diatoma elongatum (Lyngbye) Ag. var. tenuis (Ag.) Van Heurck
f. minus (Grunow) Mayer. Figs. 28-29: vista valvar. Fig. 30: vista
conectival.

Figs. 31-32.— Diatoma hiemale (Lyngbye) Heiberg var. quadratum (Kiútz.) Ross.
Fig. 33.— Plagiogramma interruptum (Greg.) Ralfs var. interruptum.

Fig. 34.— Dimerogramma minor (Greg.) Ralfs var. minor.

<586 —

LA M

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ANN

26

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LAMINA 5.

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

35.— Synedra fasciculata (Ag.) Kútz. var. fasciculata.

36.— Synedra fasciculata var. truncata (Grev.) Patrick.

37.— Synedra ulna (Nitz.) Ebr. var. ulna.

38.— Synedra ulna var. oxyrhynchus (Kútz.) Van Heurck.

39.— Asterionella formosa Hass. var. gracillima (Hantz.) Grunow,
40.— Ceratoneis arcus (Ehr.) Kutzing var. arcus.

41.— Ceratoneis arcus var. amphioxys (Rabenhorst) Brun.

42.— Ceratoneis arcus var. linearis Holmboe.

43.— Opephora lineata Edsbagge var. lineata.

44.— Opephora marina (Greg.) Petit var marina.

45.— Trachysphenia australis Petit var. aucklandica Grunow.

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36

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AL A A

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O

LAMINA 6.

Fig. 46.— Eunotia tenella (Grunow) Hustedt var. tenella.
Figs. 47-48.— Cocconeis californica Grunow var. lengana Rivera.
Fig. 49.— Cocconeis costata Gregory var. costata.

Figs. 50-51.— Cocconeis dirupta Gregory var. flexella (Janisch £ Rabenhorst)
Grunow.

Fig. 52.— Cocconeis placentula Ehr. var. euglypta (Ehr.) Grunow.

Fig. 53.— Cocconeis scutellum Ehr. var. scutellum,

Fig. 54.— Cocconeis scutellum var. ornata Grunow.

Fig. 55.— Cocconeis thumensis Mayer var. thumensis.

Figs. 56-57.— Cocconeis scutellum Ehr. var. stauroneiformis Rabh.

Figs. 58-59-60-61.— Achnanthes brevipes Ag. var. intermedia (Kutz.) Cleve.
Figs. 62-63.— Achnanthes exigua Grunow var. constricta Hustedt.

Figs. 64-65.— Achnanthes hauckiana Grunow var. rostrata Schulz.

Fig. 66.— Achnanthes lanceolata (Brébisson) Grunow var. lanceolata,

Fig. 67.— Achnanthes lanceolata var. dubia Grunow.

sh) —

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LAMINA 7.

Figs. 68-69.— Achnanthes robusta sp. nov.. Fig. 68: valva con rafe. Fig. 69: valva
con pseudorafe. Localidad tipo: Río Quenuir, Chile.

Figs. 70-71.— Achnanthes temperei M. Perag. var. temperei. Fig. 70: valva con
pseudorafe, grandes nódulos terminales. Fig. 71: valva con rafe, con
suave constricción en la parte central.

Figs. 72-73.— Rhoicosphenia curvata (Kútz.) Grun. ex Rab. var. curvata.
Fig. 72: vista conectival. Fig. 73: vista valvar.

Fig. 74.— Mastogloia pumila (Grun.) Cleve var. pumila.

Fig. 75.— Diploneis incurvata (Greg.) Cleve var. incurvata.

Fig. 76.— Diploneis papula (Schmidt) Cleve var. constricta Hustedt.
Fig. 77.—Frustulia vulgaris (lhw.) De Toni var. vulgaris.

Figs. 78-79.— Pleurosigma intermedium W. Sm. var. intermedium. Fig. 78: vista
valvar. Fig. 79: detalle de la ornamentación de la valva.

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0:

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082

LAMINA 8.

Fig. 80.— Pleurosigma naviculaceum Bréb. var. naviculaceum.

Figs. 81-82.— Pleurosigma normanii Ralís var. normant. Fig. 81: vista valvar.
Fig. 82: detalle del número de estrías.

Fig. 83.— Caloneis oregonica (Ehr.) Patrick var. oregonica.
Fig. 84.— Stauroneis anceps Ehr. var. anceps.

Fig. 85.— Stauroneis desiderata Cleve var. desiderata.

Fig. 86.— Stauroneis lapponica Cleve-Euler var. lapponica.
Fig. 87.—Pinnularia viridis (Nitz.) Ehr. var. minor Cleve.
Fig. 88.— Pinnularia baltica (Schulz) Cleve-Euler var. baltica.

Fig. 89.— Pinnularia divergens W. Sm. var. divergens.

—94 —

A Moi

L

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Fig.
Fig.
Fig.
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Fig.
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90.— Navicula

91.— Navicula

92 — Navicula

93.— Navicula

94 — Navicula

95.— Navicula

96.— Návicula

97.— Navicula

98.— Navicula

99.— Navicula

. 100.— Navicula

. 101.— Navicula

accomoda Hustedt var. accomoda.

decussis Ostrup var. decussis.

exigua Greg. ex Grun. var. exigua.

finmarchica (Cleve *k Grun.) Cleve var. finmarchica.
forcipata Grev. var. densestriata A.S.

gregaria Donkin var. gregaria.

lengana Rivera var. lengana.

litoris Salah var. irregulata var. nov.
observabilis Heiden £ Kolbe var. observabilis.
punctulata W. Sm. var. punctulata.

pupula Kútz, var. rectangularis (Greg.) Grunow.

palpebralis Bréb. ex W. Sm. var. palpebralis.

— 96:

94

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Mr

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95

101

100

= 0/16

LAMINA 10.

Fig. 102.— Navicula radiosa Kiitz. var. radiosa.

Fig. 103.— Navicula rhynchocephala Kiútz. var. amphiceros (Kútz.) Grunow.
Fig. 104.— Navicula tubulifera Geissler £ Gerloff var. tubulifera.

Figs. 105-106.— Cymbella ventricosa Kútzing var. ventricosa,

Fig. 107.— Amphora bongrainii M. Perag. var. bongrainii.

Fig. 108.— Amphora exigua Gregory var. exigua.

Fig. 109.— Gomphonema kamtschaticum Grunow var. kamtschaticum.

Fig. 110.— Gomphonema montanum Schumann var. montanum.

Fig. 111.— Gomphonema parvulum Kiitz. var. parvulum.

Figs. 112-113.— Gomphonema pseudoexiguum Simonsen var. pseudoexiggum.
Fig. 114. — Epithemia argus (Ehr.) Kútz, var. argus.

Fig. 115.— Rhopalodia gibberula (Ehr.) O. Mill. var. gibberula.

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10

LAMIN A

102

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SA 00000111), ln AN o ODO a0ULA,

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109

LAMINA ll.

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

Figs.

Figs.

Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

116.— Hantzschia amphioxys (Ehr.) Grun. var. amphioxys.

117.— Nitzschia acicularis (Kitz.) W. Sm. var. acicularis.

118.— Nitzschia acuminata (W. Sm.) Grun. var. densestriata var, nov.
119.— Niteschia angularis W. Sm. var. angularis.

120.— Nitzschia apiculata (Greg.) Grun. var. apiculata.

121.— Nitzschia dissipata (Kútz.) Grun. var. dissipata.

122.— Nitzschia fonticola Grun. var. fonticola.

123-124.— Nitzschia obtusa W. Sm. var. scalpelliformis Grunow. Fig. 123:
vista general de la valva. Fig. 124: detalle de la parte central.

125-126.— Nitzschia paradoxa (Gmelin) Grun. var. paradoxa.
127.— Nitzschia parvula Lewis A parvula.

128.— Niteschia sigma W. Sm. var. sigma.

129.— Surirella- ovalis Breb. var. salina (W. Sm.) Van Heurck.

130.— Surirella ovata Kiútz. var. smithii Cleve-Euler.

— 100—

1

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129

126

123

— 101 —

LAMINA 12.

Figs. 131-132.— Hyalodiscus .«scoticus (Kiitz.) Grun. var. scoticus. Diámetro
valvar 24 y.

Fig. 133.— Coscinodiscus curvatulus Grun. var. curvatulus. Diámetro valvar
59 y.

Figs. 134-135-136-137.— Coscinodiscus granulosus Grun. var. granulosus. Figs.
134-135: vista valvar mostrando las espinas submarginales; diámetro
valvar 19 y. Figs. 136-137: Vista valvar mostrando el anillo sub-
marginal de notorios puntos. Diámetro valvar 24 y.

Fig. 138.— Coscinodiscus janischii A. Sch. var. janischii. Areolas 3.5 en 10 y
al centro, 3-3.5 en la mitad y 4 en 10 y cerca del borde.

Figs. 139-140.— Coscinodiscus subtilis Ehr. var. subtilis, Diámetro valvar, 37 p.

— 102 —

LAMINA 12

— 103 —

LAMINA l4.

Figs. 153-154-155.— Synedra gailloni (Bory) Ehr. var. densestriata var. noV..
Fig. 153: eje apical 84 yu; transapical 5.5 pu; estrías 21 en 10 p.
Pseudorafe angosto. Figs. 154-155: eje apical 90 y; transapical 6.5 y;
estrías 21-22 en 10 ¡. Pseudorafe ancho.

Figs. 156-157.— Entopyla australis (Ebr.) var. australis. Fig. 156: eje apical
O: 157: eje apical 108 po

Fig. 158.— Eunotia exigua (Bréb.) Rab. var. tridentula Ostrup. Eje apical 20 ,,.

Fig. 159.— Cocconeis costata Gregory var. hexagona Grunow. Eje apical 19 y.

Figs. 160-161.— Cocconeis dirupta Gregory var. dirupta. Eje apical 32 y.

Figs. 162-163-164-165-166-167.— Cocconeiss formosa Brun var. marina var. nov..

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

162:
163:
164:
165:

166:

167:

eje
eje
eje
eje
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apical
apical
apical
apical
apical

35 po transapical 22 po estrias 10 en 105:
35 po; transapical 22 ps estrías 11 en 10 y.
34 yu; transap:cal 22 y; estrías 11 en 10 po
34 y; transapical 22 y; estrías 9 en 10 po
35 u; tranmsapical 22 ¡,; estrías 9 en 10 pe

eje apical 35 y; transapical 22 po estrías 9-10 en 10 ,.

— 106 —

14

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158

167

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LAMINA 15.

Figs. 168-169-170-171-172.— Cocconeis nortina sp. nov.. Fig. 168: eje apical
26.5 y; transapical 11 ¡; valva con rafe. Fig. 169: valva con pseudo-
rafe. Fig. 170: eje apical 30 yu; transapical 12 ¡; valva con rafe.
Fig. 171: eje apical 27 y; transapical 12 y; valva con pseudorafe.
Fig. 172: eje apical 24.5 u; transapical 10 u; valva con pseudorafe.

Figs. 173-174-175.— Cocconeis pseudomarginata Gregory var. pseudomarginata
Fig. 173: eje apical 47 yu; transapical 32 ¡. Fig. 174: eje apical 34 y:

transapical 21.5 y. Fig. 175: eje apical 33 yu; transapical 21 y.

Fig. 176.— Cocconeis scutellum Ehr. var. ornata Grunow. Eje apical 21.5 mus
transapical 13.5 7e

Fig. 177.— Diploneis subovalis Cleve var. subovalis. Eje apical 35 y trans-
apical 16 TA

Fig. 178.— Gyrosigma tenuisimum W. Sm. var. angustisssma Simonsen. Eje
apical 114 po transapical 6.5 po

Figs. 179-180.— Navicula libellus Greg. var. libellus. Eje apical 67 ¡u; ancho
40
pe:

Fig. 181.— Navicula spectabilis Greg. var. spectabilis. Eje apical 66 ; trans-
apical 38.4 y.

— 108 —

LLAMAN A 15

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aa
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pa
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— 109 —

LAMINA 16.

Figs. 182-183-184.— Navicula stankovici Hustedt var. chilensis var. nov.
Fig. 182: eje apical 40 u; transapical 8 y. Figs. 183-184: eje apical
45 u; transapical 8.5 y.

Figs. 185-186.— Navicula tubulifera Geissler Gerloff var. tubulifera. Fig. 185:
eje apical 18 yu; transapical 4 u. Fig. 186: eje apical 28 y; trans
apical 4.5 u

Fig. 187.— Navicula viridula (Kútz.) emend V. Heurck var. avenacea (Bréb.
ex Grun.) V. Heurck. Eje apical 51 y.

Fig. 188.— Trachyneiw aspera (Ehr.) Cleve var. elliptica Hendey. Eje apical
40.6
. pp

Figs. 189-190.— Cymbella aequalis W. Sm. var. aequalis. Eje apical 35 y; trans-
apical 9 y.

Fig. 191.— Cymbella pusilla Grunow var. pusilla. Eje apical 44 y; trans
apical 8 y.

Fig. 192.— Cymbella tumida (Bréb.) V. Heurck var. tumida. Eje apical 56 po
Figs. 193-194.— Amphora lineolata Ehr. var. lineolata. Eje apical 67 pe

Fig. 195.— Amphora ostrearia Bréb. var. ostrearia. Eje apical 81 po

Figs. 196-197.— Nitzschia obtusa W. Sm. var. obtusa. Eje apical 86.1 po

Fig. 198.— Nitzschia constricta Ralís f. parva V. Heurck. Eje apical 24.9 pe

Fig. 199.— Campylodiscus fastuosus Ehr. var. fastuosus. Diámetro 40 pe

— 110 —

16

NA

LAM

JEIBI

KE

A

ne

MERA oe ro E

INDICE DE TAXA

Achnanthes brevipes var intermedia, 42
Achnanthes exigua var. constricta, 42
Achnanthes hauckiana var. rostrata, 43
Achnanthes lanceolata var. lanceolata, 43
Achnanthes lanceolata var. dubia, 44
hAncanthes robusta var. robusta sp. nov., 44
Achnanthes temperei var. temperet, 45
Actinoptychus undulatus var. undulatus, 23
Amphora bongrainii var. bongrainii, 62
Amphora exigua var. exigua, 62

Amphora lineolata var. lineolata, 63
Amphora ostrearia var. ostrearia, 63
Asterionella formosa var. gracillima, 32
Auliscus sculptus var. sculptus, 23
Biddulphia aurita var. aurita, 24
Biddulphia aurita var. obtusa, 25
Biddulphia longicruris var. hyalina, 25
Biddulphia longicruris var. longicruris, 25
Caloneis oregonica var. oregonica, 49
Campylodiscus fastuosus var. fastuosus, 71
Ceratoneis arcus var. amphioxys, 33
Ceratoneis arcus var. arcus, 32

Ceratoneis arcus var. linearis, 33
Chaetoceros decipiens var. decipiens, 24
Chaetoceros radicans var. radicans, 24
Cocconeis californica var. lengana, 36
Cocconets costata var. costata, 36

Cocconeis costata var. hexagona, 36
Cocconeis dirupta var. dirupta, 37

Cocconeis dirupta var. flexella, 37

Cocconeis formosa var. marina var. nov., 38 .
Cocconeis molesta var. crucifera, 38
Cocconeis nortina var. nortina sp. nov., 39
Cocconeis placentula var. euglypta, 39
Cocconeis pseudomarginata var. pseudomarginata, 40
Cocconeis scutellum var. ornata, 41
Cocconeis scutellum var. scutellum, 40 h
Cocconeis scutellum var. stauroneiformis, 41
Cocconeis thumensis var. thumensis, 42
Coscinodiscus curvatulus var. curvatulus, 19
Coscinodiscus excentricus var. excentricus, 19
Coscinodiscus granulosus var. granulosus, 20
Coscinodiscus janishii var. janishii, 20
Coscinodiscus perforatus var. cellulosa, 21
Coscinodiscus radiatus var. radiatus, 21
Coscinodiscus subtilis var. subtilis, 22

1135 —

Cyclotella meneghiniana var. meneghiniana, 22
Cyclotella operculata var. operculata, 22
Cymbella aequalis var. aequalis, 60

Cymbella pusilla var. pusilla, 61

Cymbella tumida var. tumida, 61

Cymbella ventricosa var. ventricosa, 62
Diatoma elongatum var. tenuis f. minus, 28
Diatoma hiemale var. quadratum, 29
Dimerogramma minor var. minor, 29
Diploneis didyma var. didyma, 46

Diploneis incurvata var. incurvata, 46
Diploneis papula var. constricta, 47
Diploneis subovalis var. subovalis, 47
Entopyla australis var. australis, 33
Epithemia argus var. argus, 65

Epithemia zebra var. zebra, 66

Eunotia exigua var. tridentula, 35

Eunotia tenella var. tenella, 35

Frustulia vulgaris var. vulgaris, 47
Gomphonema constrictum var. constrictum, 64
Gomphonema kamtschaticum var. kamtschaticum, 64
Gomphonema montanum var. montanum, 64
Gomphonema parvulum var. parvulum, 65
Gomphonema pseudoexiguum var. pseudoexiguum, 65
Grammatophora angulosa var. angulosa, 26
Grammatophora arcuata var. arcuata, 26
Grammatophora marina var. marina, 26
Grammatophora oceanica var. oceanica, 27
Gyrosigma tenuissimum var. angustissima, 49
Hantzschia amphioxys var. amphioxys, 67
Hyalodiscus kerguelensis var. kerguelensis, 18
Hyalodiscus scoticus var. scoticus, 18
Lichmophora abbreviata var. abbreviata, 27
Lichmophora flabellata var. flabellata, 28
Mastogloia pumila var. pumila, 46

Melosira granulata var. granulata, 16
Melosira italica var. italica, 17

Melosira juergensit var. juergensii, 17
Melosira nummuloides var. nummuloides, 17
Melosira sulcata var. sulcata, 17

Melosira varians var. varians, 18

Navicula accomoda var. accomoda, 52
Navicula decussis var. decussis, 52

Navicula dicephala var. elginensis, 53
Navicula exigua var. exigua, 53

Navicula finmarchica var. finmarchica, 54
Navicula forcipata var. densestriata, 54
Navicula gregaria var. gregaria, 54

Navicula lengana var. lengana, 55

Navicula libellus var. libellus, 55

— 114 —

Navicula
Navicula
Navicula
Navicula
Navicula
Navicula
Navicula
Navicula
Navicula
Navicula
Navicula
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia
Nitzschia

litor:s var. irregulata var. nov., 55
observabilis var. observabilis, 56
palpebralis var. palpebralis, 56
punctulata var. punctulata, 57
pupula var. rectangularis, 57
radiosa var. radiosa, 57
rhynchocephala var. amphiceros, 58
spectabilis var. spectabilis, 58
stankovici var. chilensis var. nov., 59
tubulifera var. tubulifera, 59
viridula var. avenacea, 60
acicularis var. acicularis, 67
acuminata var. densestriata var. nov., 68
angularis var. angularis, 68
apiculata var. apiculata, 68
constricta f. parva, 69

dissipata var. dissipata, 69
fonticola var. fonticola, 69

obtusa var. obtusa, 70

obtusa var. scalpelliformis, 70
paradoxa var. paradoxa, 70
parvula var. parvula, 71

sigma var. sigma, 71

Opephora lineata var. lineata, 34

Opephora marina var. marina, 34

Pinnularia baltica var. baltica, 51

Pinnularia divergens var. divergens, 51
Pinnularia viridis var. minor, 52

Plagiogramma interruptum var. interruptum, 29
Pleurosigma intermedium var. intermedium, 48
Pleurosigma naviculaceum var. naviculaceum, 48
Pleurosigma nicobaricum var. nicobaricum, 48
Pleurosigma normanti var. normanii, 49
Rhabdonema arcuatum var. arcuatum, 27
Rhoicosphenia curvata var. curvata, 45
Rhopalodia gibberula var. gibberula, 66
Skeletonema costatum var. costatum, 19
Stauroneis anceps var. anceps, 50

Stauroneis desiderata var. desiderata, 50
Stauroneis lapponica var. lapponica, 51

Surirella
Surirella
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra

ovalis var. salina, 72

ovata var. smithit, 72

fasciculata var. fasciculata, 30
fasciculata var. truncata, 30

fulgens var. mediterranea, 30
gailloni var. densestriata var. nov., 31
ulna var. oxyrhynchus, 32

ulna var. ulna, 31

Trachyneis aspera var. elliptica, 60
Trachysphenia australis var. aucklandia, 34

—115-—

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ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, EL
27 DE MARZO DE 1974.

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GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una
Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que
los números se publican tan pronto como la Comisión
Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:
COMISION EDITORA
CAsiLLA 301 — CONCEPCIÓN
GHILE

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BOTANICA 19714 WN? ON? 26
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REVISION DEL GENERO POLYACHYRUS
(COMPOSITAE)

MARIO RICARDI y EDUARDO WELDT

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION A,
Chile

ENSTITUTO DE" BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE
DIRECTOR : Mario Alarcón A.
EDITORES
Mario Alarcón A. Lajos Biro B.
Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

GAYANA

NS 11 TT UPOS DE BO LOGÍA

BOTANICA 1972 No 26

REVISION DEL GENERO POLYACHYRUS
(COMPOSITAE)

MARIO RICARDI y EDUARDO WELDT

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
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REVISION DEL GENERO POLYACHYRUS (*)
(COMPOSITAE)

POR

MARIO RICARDI y EDUARDO WELDT

RESUMEN

Se hace un estudio sistemático y crítico del género austroamericano
Polyachyrus (Perú, Chile), basado en organografía externa comparada y com-
plementado con anatomía foliar y morfológica de los granos de polen.

Se reconocen como especies válidas: P. annuus Johnston, P. carduoides
Philippi, P. cinereus Ricardi et Weldt, P. fuscus (Meyen) Walpers, P. gayi
Remy, P. poeppigii (Kunze ex Lessing) Lessing y P. sphaerocephalus D. Don
y la subespecie P. poeppigi (Kunze ex Lessing) Lessing subsp. multifidus
(D. Don) Ricardi et Weldt.

Se adjunta una clave para las especies, dibujos originales, mapas de dis-
tribución e índice de colectores.

ZUSAMMENFASSUNG

Die siidamerikanische Gattung Polyachyrus (Perú, Chile) wird kritisch
und sistematisch untersucht auf Grund der Organografie, ergenzt von der
Anatomie des Blattes und morfologie der Polenkcerner.

Folgende Arten werden als gúltig anerkannt: P. annuus Johnston,
P. cauduoides Philippi, P. cinereus Ricardi et Weldt, P. fuscus (Meyen)
Walpers, P. gay: Remy, P. poeppigii (Kunze ex Lessing) Lessing, P. sphaero-
cephalus D. Don und die Subspecies P. poeppigii (Kunze ex Lessing) Lessing
ssp. multifidus (D. Don) Ricardi et Weldt,

(*) Plan estudio de la vegetación desértica de las provincias de Tarapacá, Antofagasta y Atacama.

> UA

Eine Verschlússelung der Arten wird beigefúgt, ausserden Originalzeich-
nungen, Verbreitungskarten und Sammlerverzeichniss.

SUMMARY

A systematic and critical study of the Austroamerican genus Polyachyrus
(Peru, Chile) is presented. Observations about comparative external morpho-
logy, leaves anatomy and pollen morphology was made.

This genus comprehends the following taxa: P. annuus Johnston, P.
carduoides Philippi, P. cinereus Ricardi et Weldt, P. fuscus (Meyen) Walpers,
P. gay3 Remy, P. poeppigii (Kunze ex Lessing) Lessing and P. sphaerocephalus
D. Don and the subspecies P. poeppigi (Kunze ex Lessing) Lessing subsp.
multifidus (D. Don) Ricardi et Weldt.

A key for the species, original plates, distribution maps and collector
guide are also given.

INTRODUCCION

El género Polyachyrus pertenece a la tribu Mutisieae subtribu Nassauvinae
de la familia Compositae. Su distribución está confinada a la región sudocci-
dental Americana, Perú y Chile, zona donde Mutisieae es el grupo de com-
puestas dominantes.

El género alcanza en Chile su desarrollo máximo, ocupando áreas geo-
gráficas bien definidas, en estricta concordancia con características orográficas
y climáticas. Aparte del interés que tiene la caracterización de las especies
para el conocimiento de la flora del morte de Chile, la dilucidación de los
problemas nomenclaturales, relativos a prioridad y sinonimia, permite entregar
una comprensión total del género y especies, estudiado conforme al método
clásico de morfología externa comparada, con aportes de anatomía, palino-
logía y fitogeografía.

El abundante material revisado y el acopio de datos obtenidos en terreno,
indica gran afinidad entre las especies que integran el género, donde el mejor
caracter diferencial lo proporcionan las hojas, indumento y hábito. De las
40 especies descritas sólo se mantienen 6, más una nueva especie y una sub-
especie.

Los Herbarios consultados fueron los siguientes:

Herbario Universidad de Concepción, Concepción (CONC).
Gray Herbarium, Harvard University, Cambridge (GH).
Herbario del Museo Nacional de Historia Natural, Santiago (SGO).

stas Y —

Herbarium of the University of California, Berkeley (UC).
Herbario de Carlos Jiles (H. Jiles).

Herbario Museo de La Plata (LP).

Staatsinstitut fúr allgemeine Botanik, Hamburg (HBG).
Botanische Staatssammlung, Múnchen (M).

Botanisches Museum, Berlin (B).

Herbario Vargas, Perú (H. Vargas).

A sus curadores y dueños se agradecen las facilidades otorgadas.

HISTORIA

En la historia del género se consignan solamente aquellos datos, que a
juicio de los autores tienen especial interés para la comprensión del grupo.

1811: Mariano Lagasca, Amenidades Naturales de las Españas, 1:37,
publicó el género Polyachyrus, sin indicar procedencia ni recolector del ma-
terial estudiado.

1812: Augusto P. De Candolle, Annales du Muséum d'Histoire Naturelle,
19:69, entregó una diagnosis del género, escribiéndolo con falta, “Polyachurus
Lag. diss. ined.”. De Candolle abrevió “Diss, ined.” del segundo título del libro
de La Gasca.

1828: Heinrich Reichenbach, Conspectus Regni Vegetabilis etc., 1:100,
publicó Cephaloseris Poepp. como afin a Dumerilia Lag., únicamente como
epíteto sin diagnosis y tomándolo de los manuscritos de Poeppig.

1830: Christian Lessing, Linnaea, 5:5, Figs. 6-9-10-11-12-13-14, cita como
sinónimo de Polyachyrus Lag. a Cephaloseris Poeppig (syn. pl. Amer. austr. ms.)
y da una diagnosis del último género. Líneas más abajo dice: “C. poeppigti
(Kunze in Poeppig Coll. pl. Chil. 1)” y describe por primera vez la especie.
Cephaloseris poeppigii era una entidad nomenclatural que figuraba en la
etiqueta NO 221 de las colecciones chilenas de plantas de Poeppig. Lessing, a
despecho de su reconocimiento del género Cephaloseris como sinónimo de
Polyachyrus describe a C. poeppigi. Corresponde entonces en rigor, citar a
la especie como P. poeppigi (Kunze ex Lessing) Lessing y como su basónimo
Cephaloseris poeppigii Kunze ex Lessing. Por ser la primera especie conocida
corresponde citarla como la típica del género.

1830: David Don, The Transactions of the Linnean Society of London,
16:229, dio a conocer a P. sphaerocephalus (Perú, Leg. Ruiz et Pavón), re-
saltando que su nueva especie tenía un hábito muy semejante al género
Echinops. El volumen 16 de Transactions se publicó en tres fascículos: 1829
(págs. 1-150), 1830 (págs. 151-454) y 1833 (pág. 455-).

a.

1831: William J. Hooker, Botanical Miscellany, 2:222 tab. 92, fundó
el género Bridgesia y la especie B. echinopsoides Hook.

1832: Chr. Lessing, Syn. Gen. Comp.: 400, dejó como sinónimo de P.
sphaerocephalus D. Don a Bridgesia echinopsoides Hook.

1832: David Don, The Philosophical Magazine, 11:390, dio a conocer
P. auritus y P. multifidus, especies descubiertas al estudiar las colecciones he-
chas en Chile por Gillies.

1833: Antoine Guillemin, Archives de Botanique, 2:466, reprodujo tex-
tualmente las diagnosis de P. auritus y P. multifidus dadas por D, Don en
Phil. Mag.

1834: F, Ferdinand Meyen, Reise um die Erde, 1:406, describió el género
Diaphoranthus y la especie D. fuscus.

1885: Eduard Poeppig y Stephan Endlicher, Nova Genera ac Species
Plantarum, 1:14, tab. 23, dan diagnosis e ilustración de P. poeppigit. También
para Bridgesia echinopsoides Hook. proponen el nuevo nombre de P. bridgestt,
incluyendo como su sinónimo a Diaphoranthus fuscus Meyen, cometiendo un
doble error, ya que el primer taxon es sinónimo de P. sphaerocephalus D. Don
y el segundo es una buena especie chilena que fue combinada correctamente
por Walpers en 1843.

1835: William J. Hooker y George A. Arnott, Companion to the Bota-
nical Magazine, 1:36, publicaron el género con falta, “Polyachrus”.

1838: Augusto P. de Candolle, Prodromus Systematis Naturalis Regni
Vegetabilis, 7:53, da diagnosis del género y de las especies conocidas e indica
sinónimos. Por primera vez cita a P. decurrens como una posible especie iné-
dita de Lagasca y a P. auritus Don entre los sinónimos de P. poeppigi (Kz.
ex Less.) Less. También da a conocer a P. niveus Lag. ex DC. e insinúa que
P. multifidus D. Don y Diaphoranthus fuscus Meyen podrían ser sus sinónimos.
Además combina Bridgesia echinopsoides Hook., cometiendo el error de dejar
como sinónimo a P. sphaerocephalus D. Don que era una entidad más antigua.

Este ordenamiento de De Candolle indujo a errores a los botánicos que
posteriormente se preocuparon del tema. Como se verá más adelante, en el
tratamiento sistemático de las especies, P. niveus Lag. ex DC. y P. echinop-
soides (Hook.) DC. son sinónimos de P. sphaerocephalus D. Don; P. fuscus
(Meyen) Walp. es un taxon válido y P. multifidus D. Don se ha subordinado
como una subespecie de P. poeppigii (Kunze ex Less.) Less.

1838: Augusto P. De Candolle, Collection de Mémoires, 9:37, Fig. 15,
da un comentario del género e ilustra a P. niveus Lag. ex DC., suponiendo
que un ejemplar del mismo, recolectado por Née, sirvió a Lagasca para su
estudio, lo que bien puede ser efectivo, pero en ningún caso el material era
de Chile, como afirma, sino de Perú. La lámina muestra muy bien a P. sphaero-
cephalus D. Don y es notablemente semejante a Bridgesia echinopsoides Hook.

peon Be

1839: Augusto P. De Candolle in Delessert, Icones Selectae Plantarum,
4:37, tab. 84, da una corta descripción de P. poeppigiúi más una buena ilus-
tración, e indica correctamente a P. auritus D. Don y P. decurrens Lag. ex
DC. como sinónimos.

1841: Thomas Nuttal, Transactions of the American Philosophical So-
ciety, n.s., 7:123, publicó su nueva especie, P. glandulosus de Perú, basándose
en material recolectado por Mr. Curson.

1843: Wilhelm G. Walpers in Meyen, Observationes Botanicas, Novarum
Actorum Academiae Caesareae Leopoldinae-Carolinae Naturae Curiosorum, 19,
Suppl. 1:288, combinó correctamente Diaphoranthus fuscus Meyen a P. fuscus
(Meyen) Walp.

1843: Wilhelm G. Walpers, Repertorium Botanices Systematicae, 2:681,
publicó con falta el nombre del género (Polyachyris), además repite la diag-
nosis dada por Nutall para P. glandulosus.

1847: Jules Remy in Gay, Flora Chilena, 3:370, entregó diagnosis del
género y de cuatro taxa chilenos: P. poeppigi, P. niveus, P. fuscus y de su
nueva especie P. gay!.

Remy, al aceptar a P. niveus Lag. ex DC. como una entidad chilena,
no reparó en que ésta era peruana y que su nombre válido era P. sphaero-
cephalus D. Don y que P. multifidus D. Don era una subespecie chilena de
P. poeppigi (Kunze ex Less.) Less. y no un sinónimo de la primera. En parte
aceptó lo expresado por De Candolle, Prodromus, manteniendo el equívoco.

1856: Hugh A. Weddell, Chloris Andina, 1:56, Fig. 13a, publicó P. vi-
llosus para el interior de Arica, región del Volcán Tacora.

1856: Rodulfo A. Philippi, Linnaea, 8:713, describe dos nuevas especies:
P. macrotis y P. litoralis.

1860: Rodulfo A. Philippi, Viage al Desierto de Atacama, 202, da a
conocer P. roseus y P. carduoides, dos nuevas especies atacameñas.

1861: Carl H. Schultz (Bipontinus), Pollichia, 18-19:186, entregó la diag-
nosis de su nueva especie P. uniflorus, por sobre la base de material recolectado
por Haenke en Perú, posiblemente en el área donde habita P. sphaerocephalus.

1865: Rodulfo A. Philippi, Anales de la Universidad de Chile, 27:348,
dio a conocer P. latifolius.

1873: George Bentham y Joseph D. Hooker, Genera Plantarum, 2, 1:499,
redescribieron el género e indicaron que constaba de siete especies de Chile
y Perú.

1886: Rodulfo A. Philippi, Anales de la Universidad de Chile, 69:261-
273, publicó un estudio crítico sobre las especies chilenas de Polyachyrus, 15
en total, de las cuales P. foliosus, P. glabratus, P. tarapacanus, P. nivalis, P.
sanromani, P. calderensis y P. tenuifolius eran nuevos para la ciencia. Tam- :
bién dio una clave y dibujos de las hojas de cada especie.

pa

1887: Rodulfo A. Philippi, Botanische Jahrbúcher fúr Systematik, Pflan-
zengeschichte und Pflanzengeographie, 8:69-78, reprodujo en alemán la mono-
grafía publicada en el volumen 69 de los Anales de la Universidad de Chile
(1886).

1904: Karl Reiche, Anales de la Universidad de Chile, 115:348-352, 563-
566, expuso un estudio crítico de las especies chilenas, aceptando 14 especies.
Su monografía la acompañó de una clave, más una nueva especie P. selinoides
y dos combinaciones nuevas: P. fuscus var. roseus (Phil.) Reiche y P. poeppigii
var. litoralis (Phil.) Reiche.

1905: Karl Reiche, Flora de Chile, 5:367-374, reprodujo textualmente la
monografía publicada en los Anales de la Universidad de Chile, volumen 115.

1929: Iván M. Johnston, Contributions from the Gray Herbarium of
Harvard University, 85, describió cuatro nuevas especies: P. virgatus (p. 132),
P. annuus (p. 134), P. rigidus (p. 171) y P. mollendoensis (p. 179). Las tres pri-
meras del Norte de Chile y la última del Sur de Perú.

1931: Iván M. Johnston, Contributions from the Gray Herbarium of
Harvard University, 95:35, pl. 7, Fig. 4, dio a conocer P. nesites, nueva especie
peruana de la isla Sangallan.

1945: Josephine Koster, Blumea, 5:675, Fig. 6 a-b, publicó su nueva
especie P. oblongiflorus para la costa chilena de Antofagasta.

POLYACHYRUS Lagasca

LAGASCA, Amen. Nat. 1:37, 1811. POIRET in Lamarck, Encycl. Meth. Bot.
Suppl. 4:472, 1816. LESSING, Linnaea, 5:5, 1830. LESSING, Syn. Gen.
Comp. 1:400, 1832. DE CANDOLLE, Prodromus, 7:53, 1838. REMY in
Gay, Flora Chilena, 3:370, 1847. BENTHAM et HOOKER, Gen. Pl.
2(1):499, 1873. PHILIPPI, Anales Univ. Chile, 69:261, 1886 et Bot. Jahrb.
8:69, 1887. REICHE, Anales Univ. Chile, 115-348, 1904 et Flora de Chile,
4:367, 1905.

Cephaloseris POEPPIG ex REICHENBACH, Cons. Reg. Veg. 1:100, 1828.

Bridgesia HOOKER, Bot. Misc. 2:228, 1831.

Diaphoranthus MEYEN, Reise um die Erde, 1:406, 1834.

Polyachurus (sphalma) DE CANDOLLE, Ann. Mus, Hist. Nat. 19:69, 1812,

Polyachrus (sphalma) HOOKER et ARNOTT, Companion Bot. Mag. 1:36,
1835.

Polyachyris (sphalma) WALPERS, Rep. Bot. Syst. 2:681, 1843,

E

Especie tipo: Polyachyrus poeppigii (Kunze ex Less.) Less. Chile.

Capítulos bifloros, excepcionalmente trifloros, sésiles, muy aproximados,
provistos de una filaria aleznada glabra más corta que el invólucro, dispuestos
helico:dalmente sobre un raquis carnoso, lanoso, formando glomérulos solitarios
o pseudo-corimbosos. Invólucro cocleariforme con 5 brácteas; la externa glabra
o pauci-glandulosa, de contorno oblongo, fuertemente canaliculada, gibosa en
la base del dorso, abarcando a la primera flor y a las cuatro brácteas restantes;
brácteas laterales 2, oblongo-lanceoladas, glabras; brácteas internas 2, semi-
montantes, de contorno oblongo, glabras, opuestas, incluyendo a la segunda
flor. Flores homógamas, blancas o rosadas, bilabiadas; labio exterior tridentado;
labio inferior bifido revoluto, más corto que el exterior. Estambres 5, anteras
largas, exertas, sagitadas. Estilo largo, bulboso en la base; estigma exerto, con
los brazos largos divergentes, semicilíndricos y obtusos, densamente papilosos
en el borde interno. Aquenio aovado, hispidiúsculo, el de la primera flor
generalmente fértil, coronado por un vilano de largo desigual; el de la segunda
flor, estéril, con un vilano más corto que el invólucro; vilano uniseriado,
palaceo plumoso, de color blanco.

Sufrútices ramificados, decumbentes, escandentes o postrados o terófitos
sub-arrosetados o arrosetados. Raíz pivotante, profunda y leñosa en las formas
perennes, algo fibrosa en las formas herbáceas. Ramas teretes, lisas o estriadas,
poco hojosas, a veces confertas en la región basal y media; glabras en la base,
glandulosas, araneosas o glanduloso-araneosas hacia el ápice. Hojas alternas,
pinatilobadas o pinatisectas, amplexicaules, semi-amplexicaules o decurrentes,
las inferiores atenuadas en pseudopeciolo, las superiores abruptamente sésiles;
carnosas, crasas o membranosas, de contorno linear a oblongo, glabras, glandu-
losas O araneosas en la haz, glandulosas o velutino-araneosas en el envés; de
margen entero, mucronado o espinudo. Aurículas conspicuas, orbiculares, en-
teras o dentadas, menores en las hojas inferiores, a veces inconspicuas.

Al sopesar, críticamente, los caracteres morfológicos de las diversas
especies del género, se pudo comprobar que los correspondientes a los órganos
reproductores acusaban una extraordinaria similitud y uniformidad eviden-
ciada, incluso, en magnitud. Esta uniformidad morfológica, carente de signi-
ficación para establecer diferencias interespecíficas, ha llevado a la conclusión
de que es innecesario, por repetitivo, describir para cada especie flor e in-
florescencia y que es suficiente la diagnosis dada para el género. Los mejores
caracteres los presentó la morfología de la hoja, que posee rasgos cuantita-
tivos constantes,

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.

Las especies del género Polyachyrus habitan de preferencia regiones
áridas de las vertientes sudoccidentales de los Andes de Perú y Chile (119S-
3505).

en 0

El límite norte corresponde a P. sphaerocephalus (2.000-3.500 m s.m.),
sufrútice andino-xerofítico que se extiende desde el Departamento de Lima,
Perú, hasta el Departamento de Iquique, en la provincia chilena de Tarapacá.
En la sección norte del Departamento Peruano de Ica, Isla Sangallan, hasta
el sur de la provincia de Coquimbo, habita P. fuscus que, junto a ciertas €s-
pecies de Nolanáceas, son los principales componentes de comunidades de
sufrútices con hojas carnosas del litoral desértico costero. En el Departamento
de Arequipa aparece P. annuus, especie litoral, que abarca hasta el límite sur
de la provincia de Antofagasta; muy característico por ser la única especie
anual del género. Más al sur, en el límite de las provincias de Antofagasta
y Atacama, vegeta P. cinereus, constituyendo un interesante endemismo del
matorral desértico costero. En la latitud de Taltal, siempre formando parte
de la vegetación costera, se integra P. poeppigiú, que continúa siempre vecino
a la costa hasta la provincia de Curicó. Como último componente de la ve-
getación xerofítica costera, habita P. gay?, desde el Departamento de Copiapó,
provincia de Atacama, hasta el norte de la provincia de Coquimbo,

Formando parte de la vegetación de altura, sobre los 800 m s.m., se
encuentra P. carduoides, que se extiende desde el sur de Antofagasta, hasta
el norte de la provincia de Aconcagua. Más al sur, en la provincia de Atacama,
con una distribución altitudinal intermedia entre las especies litorales y las
de la cordillera, se encuentra P. poeppigú subsp. multifidus.

De lo expuesto se puede resumir que el género Polyachyrus presenta
dos áreas distribucionales bien específicas, una formada por las especies lito-
rales P. annuus, P. fuscus, P. cinereus, P. poeppigi y P. gayi, que se extiende
desde el Departamento de Arequipa, Perú, hasta la provincia chilena de Cu-
ricó, y la otra área, formada por las especies cordilleranas P. sphaerocephalus
y P. carduoides, que habitan desde el Departamento de Lima, Perú, hasta la
provincia de Coquimbo. Sin embargo, el género parece presentar un centro
de dispersión bien definido, ubicado en la provincia de Atacama, región donde
las especies cordilleranas se conectan con las litorales a través de P. poeppigu
subsp. multifidus. Además corresponde a la zona de más alta diversidad espe-
cífica.

OBSERVACIONES

HOJA.

Las hojas con mayor o menor intensidad poseen autículas, son amplexi-
caules en P. poeppigil, P. carduoides y P. sphaerocephalus; semiamplexicaules
en P. fuscus y P. cinereus; en P. gayt, decurrentes. En cuanto a la textura,
son membranosas en P. poeppigii subsp. poeppigii, P. gayi y P. carduoides;

a”

crasas en P. poeppigi subsp. multifidus, P. sphaerocephalus y P. cinereus;
carnosas en P. fuscus debido a la gran cantidad de glándulas en la cara
adaxial. Con relación a la división del margen, en P. fuscus, P. cinereus y
P. gayi los segmentos son obtusos, más o menos profundos e inermes; en P.
poeppigút, P. annuus y P. sphaerocephalus son mucronados; espinudos en P.
carduoides. :

Hojas bifaciales con mesófilo diferenciado; las epidermis uniestratificadas;
empalizada compuesta de 2-3 corridas de células casi isodiamétricas; parén-
quima fofo bien desarrollado, ocupando un tercio a un cuarto del mesófilo.
En general para todas las especies las diferencias antómicas son poco signi-
ficativas.

INDUMENTO.

El indumento consta de pelos unicelulares y pelos glandulosos capitados
pluricelulares.

Los pelos unicelulares, de 0,1-0,3 mm de largo, alcanzan su mayor abun-
dancia y longitud en el envés de las hojas y en los tallos nuevos. En P. cinereus
y P. sphaerocephalus son extraordinariamente abundantes en todos los órganos
vegetativos formando una cobertura velutino-araneosa, la menor abundancia
la presentan P. poeppigúu y P. annuus.

Pelos glandulosos, de 0,1-0,2 mm de largo, compuestos de 2-3 células
basales y una célula capitada apical de mayor tamaño. Son muy abundantes
en todos los órganos vegetativos de P. fuscus; menos abundantes en P. car-
duoides, P. poeppigii y P. gayi y faltan en P. sphaerocephalus y P. cinereus.

POLEN.

El estudio de la morfología de los granos de polen acusa una notable
similitud para las distintas especies. De acuerdo a Parra y Marticorena (1972)
es la siguiente: “granos de polen subprolatos a esferoidales. Elevamiento polar
a veces imsinuado. Colpos generalmente con sus extremos redondeados, már-
genes de los colpos lisos o algo irregulares, con tendencia a juntarse en el
ecuador. Membrana colpal lisa o rara vez con procesos seximosos insinuados.
Ora lalongados, con los extremos ecuatoriales agudos, bordes polares poco
desarrollados. Amb redondeado.

Exina más gruesa en el ecuador, crasisexinosa. Tectum de m/m el mismo
grosor en los polos que en el ecuador, provisto de espínulas, baculado; báculos
no ramificados, de tamaño y forma irregular. Membrana del soporte del tectum
fina y zigzagueante y de m/m el mismo grosor que la membrana terminal.
Infratectum de m/m el mismo grosor en los polos que en el ecuador, baculado;
báculos no ramificados, de características semejantes a los tectales. Nexina
más gruesa en el ecuador que en los polos, diferenciación de nexina 1 y 2
no evidente”.

=M=

Siguiendo a los mismos autores y de acuerdo a la estructura de la exina
y presencia o ausencia de procesos sexinosos en la membrana colpal, habría
que ubicar a Polyachyrus vecino a Leuceria, Moscharia y Oxyphyllum, para
lo cual proponen el subgrupo Leuceria dentro del grupo Leuceria.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DEL GENERO POLYACHYRUS

1.— Plantas anuales.
1. P. annuus

1.— Plantas perennes.

2.— Hojas de borde apiculado y margen no revoluto, espínulas agu-

das de hasta 2 o más mm de largo.
8
2. P. carduoides

2.— Hojas imermes o cortamente mucronadas, revolutas.
3.— Aurículas decurrentes. Tallos poco hojosos ............. ns 3. P. gay
3.— Aurículas no decurrentes; amplexicaules o semiamplexicaules.
4.— Aurículas amplexicaules, orbiculares, membranosas.

5.— Aurículas orbiculares grandes, generalmente de más
de 1 cm de diámetro, con nerviación reticulada
CONSPICUA iz 4. P. poeppigú subsp. poeppigúi

5.— Aurículas orbiculares pequeñas, generalmente meno-
res de 1 cm. de diámetro, con nerviación inconspicua
4a.— P. poeppigii subsp. multifidus

44.— Aurículas semiamplexiculares, glandulosas o velutino-

aracnoideas.

6.— Haz de la hoja densamente glanduloso.

6.— Haz de la hoja eglanduloso, velutino-aracnoideo.

7.— Hojas de 5-15 cm. de largo, planas, pinatisectas;
segmentos dentados.
6.—P. sphaerocephalus

7.— Hojas de 2,5-5 cm. de largo, fuertemente
revolutas, pinatipartidas; segmentos en-

teros.
7.—P. cinereus

1.—POLYACHYRUS ANNUUS Johnston

Johnston, Contr. Gray Herb. 8:134, 1929,
Polyachyrus mollendoensis Johnston, Contr. Gray Herb. 8:179, 1929.

Terófito arrosetado, subarrosetado, erguido o escandente, de tamaño va-
riable. Raíz pivotante, delgada, sinuosa, con escasas raíces secundarias. Ramas
de 6-18 cm. de largo, hojosas en la base, moderadamente hojosas hacia el
ápice, débilmente araneosas. Hojas amplexicaules, membranáceas, alternas, en-
trenudos de 0,7-3 cm. de largo, de contorno oblongo-lanceolado, de 6-18 cm
de largo, por 1,6-4,8 cm de ancho, glabras o aracnoídeas, densamente blanco-
punteadas en la haz, albo-aracnoídeas en el envés, las inferiores atenuadas
en pseudopeciolo de 1,5-3 cm de largo, las superiores sésiles y regularmente
pinatilobadas; lóbulos 3-5 pares, opuestos, subopuestos o alternos, desiguales,
triangulares u oblongos, mucronulados, con margen sinuado y revoluto; aurí-
culas orbiculares, de 1-3 cm. de diámetro (en las hojas basales más reducidas
o casi obsoletas), enteras o sublobadas. Corolas rosadas.

Especie un tanto polimorfa en cuanto a tamaño y largo de los entrenudos
se refiere, posiblemente debido a las condiciones ambientales de las localidades
donde habita. En las zonas de extrema aridez adopta un hábito arrosetado,
reduciendo notablemente la magnitud de los órganos. En quebradas, ambientes
húmedos o donde las neblinas nocturnas y matinales son más densas, los in-
dividuos alcanzan su mayor desarrollo hasta constituir formas escandentes.
I. M. Johnston describió P. annuus para las poblaciones locales arrosetadas
y P. mollendoensis para las formas escandentes y de mayor tamaño.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.
Terófito propio del litoral del Departamento de Arequipa, Perú, a la
provincia de Antofagasta, Departamento de Taltal, Chile (1695 - 2685).

MATERIAL ESTUDIADO.—PERU. Dpto. Arequipa. Prov. Camana; 300 m
s.m., leg. Ferreyra 2518, 8-X1-1947 (LP). Prov. Islay; Mollendo, hillside directly
back of the port, leg. Ivan M. Johnston 3539, 16-X-1925 (GH, TIPO: P.
mollendoensis Johnston); 5 Km east of Mollendo, 175 m s.m., leg. C.R. Worth
and J.L. Morrison 15758, 30-1X-1938 (UC, GH); Mejía, Hacienda Chollarcapo,
ca. 200 m s.m., leg. E. Guenther 48 (HBG); Mejía, Bliten rosa, 30 m s.m.,
leg. E. Guenther 48a, 7-X1-1923 (HBG).

Dpto. Moquegua. Prov. Moquegua; llo, lomas de Mostacilla, 50-300 m s.m.,
leg. C. Vargas 8591, XI-1949 (GH, H. Vargas).

CHILE. Prov. Tarapacá. Dpto. Iquique; Quebrada Huantajaya, 700 m
s,m., leg. Dr. E. Werdermann 758, IX-1925 (UC, GH, M); Camino de Iquique

a >

a Patillos, cumbres de los cerros frente al Km 22, leg. Ricardi-Marticorena-
Matthei 1341, 17-X-1965 (CONC).

Prov. Antofagasta. Dpto. Tocopilla; Tocopilla, steep hillside ca. 6 Km
north of port and about opposite Caleta Duendes, leg. Ivan M. Johnston 3538,
18-X-1925 (GH, TIPO); Tocopilla, leg. F. Jaffuel 1001, 27-X-1930 (GH). Dpto.
Taltal; Vicinity of Aguada de Miguel Diaz, ca. lat. 24035'S., leg. Ivan M.
Johnston 5334, 2-X11-1925 (GH); Quebrada de Anchuña, leg. M. Ricardi 2559,
20-1X-1953 (CONC).

2.—POYLACHYRUS CARDUOIDES Philippi

Philippi, Viage Des. Atac.: 202, 1860. Philippi, Anales Univ. Chile, 69:264,
Fig. 8, 1886 et Bot. Jahrb. 8:72, Lám. 2, Fig. 8, 1887. Reiche, Anales
Univ. Chile, 115:350, 1904 et Flora de Chile, 4:369, 1905.

Polyachyrus latifolius Philippi, Anales Univ. Chile, 27:348, 1865. Philippi,
Anales Univ. Chile, 69:265, Figs. 1 y 2, 1886 et Bot. Jahrb. 8:72, Lám. 2,
Figs. 1 y 2, 1887. Reiche, Anales Univ. Chile, 115:350, 1904 et Flora de
Chile, 4:369, (1905).

Polyachyrus foliosus Philippi, Anales Univ. Chile, 69:265, Fig. 3, 1886 et Bot.
Jahrb. 8:72, Lám. 2, Fig. 3, 1887. Reiche, Anales Univ. Chile, 115:351,
1904 et Flora de Chile, 4:370, 1905.

Polyachyrus glabratus Philippi, Anales Univ. Chile, 69:266, Fig. 13, 1886 et
Bot. Jahrb. 8:73, Lám. 2, Fig. 3, 1887. Reiche, Anales Univ. Chile, 115:
351, 1904 et Flora de Chile, 4:370, 1905.

Polyachyrus rigidus Johnston, Contr. Gray Herb. 8:171, 1929.

Sufrútice erecto, ramoso, leñoso en la base, de 40-80 cm de altura. Raiz
leñosa, profunda, sinuosa. Ramas teretes, hojosas, levemente estriadas, glabras
o moderadamente glandulosas, a veces araneosas hacia el ápice. Hojas am-
plexicaules, alternas, entrenudos de 15-25 mm de largo, espinulosas, cartáceas,
planas, las inferiores atenuadas en pseudopeciolo, las superiores abruptamente
sésiles, de contorno oblongo lanceolado, de 7-15 cm de largo por 2,5-5 cm de
ancho, glabras, moderada o abundantemente glandulosas en ambas caras, algo
araneosas en el envés, pinatisectas; segmentos 4-7 (-10) pares, generalmente
opuestos, triangular-aovados, inciso dentados, dientes 3-4 profundos triangu-
lares, con espínulas de 2 m/m de largo; aurículas suborbiculares, de 1-3 cm
de ancho, mayores en las hojas medianas y superiores, inciso-dentadas, con
3-5 espínulas agudas por aurícula. Glomérulos 2-3, de 1,7-1,9 cm de diámetro,
reunidos en pseudocorimbos de 4-10 cm de largo. Bráctea exterior del invólucro
débilmente glandulosa, a veces lampiña.

Mo

Caracteriza muy bien a la especie el tipo escarioso-laciniado de las
hojas, las espínulas punzantes, la textura papirácea y el margen no revoluto,
atributos que la hacen inconfundible respecto a las restantes especies del
género.

P. rigidus de 1. M. Johnston representa a ejemplares más glandulosos
que la forma típica. P. glabratus de R. A. Philippi corresponde a individuos
con escaso indumento y P. foliosus y P. latifolius del mismo autor, a muestras
con mayor o menor profundidad en la segmentación de la lámina.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.

Sufrútice adaptado a ambientes xerofíticos y pedregosos entre 800-3.000 m
s.m., habitante del matorral preandino y andino del sur de la provincia de
Antofagasta hasta el norte de la provincia de Aconcagua.

MATERIAL ESTUDIADO. CHILE. Prov. Antofagasta. Dpto. Taltal; Valle
Sandón, 2743 m s.m., ca. lat. 2594"S, 61917'W, leg. R. A. Philippi (SGO, TIPO).

Prov. Atacama. Dpto. Chañaral: Quebrada de Potrerillos, below Agua
Dulce, 2550 m s.m., leg. Ivan M. Johnston 2700, 22-X-1925 (GH), TIPO:
P. rigidus Johnston); Encantada, ca. lat. 25055'S, 69015"W, leg. G. E. Gulig
(LP); Renquilla, Chañaral Alto, leg. San Roman (SGO). Dpto. Copiapó:
Estancia Manflas, en los faldeos de los cerros, leg. Ricardi-Marticorena-Matthei
1482, 25-X-1965 (CONC); Quebrada Chinches, cerca de Burgos, 3020 m s.m.,
leg. Marticorena-Matthei-Quezada 527, 6-1-1973 (CONC); Bandurria, cerca de
Chañarcillo, leg. F. Geisse (SGO, SINTIPO: P. foliosus Phil.); Los Molles,
prope Chañarcillo, 1876 (SGO); Los Molles, leg. Ortega, 1X-1876 (SGO); La
Guardia, al interior del valle de Jorquera, leg. O. Zoellner 4047, 12-1-1970
(CONC); Quebrada Puquios, entre Copiapó y Tres Puntas, leg. F. Philippi
(SGO, SINTIPO: P. foliosus Phil.); Camino a la Quebrada de las Vizcachas,
a 39 Km de La Puerta, 3000 m s.m., leg. Ricardi-Marticorena-Matthei 656,
1-11-1963 (CONC); Quebrada Puquios, ca. 1500 m s.m., ca. lat. 27016'S,
69055'W, leg. F. Geisse 1865 (SGO, TIPO: P. latifolius Phil.); Piedra Colgada,
Hierba Buena, prope Carrizal, leg. F. Philippi, IX-1885 (SGO, SINTIPO:
P. glabratus Phil.). Dpto. Huasco. 60 Km east of Vallenar, road to San Felix,
800 m s.m., leg. C. R. Worth and J. L. Morrison 16209, 24-X-1938 (UC, GH).
Dpto. Freirina. Carrizal, IX-1885 (SGO).

Prov. Coquimbo. Dpto. Elqui: Puente de San Guillermo sobre el río
Claro, entre Rivadavia y Monte Grande, 880 m s.m., leg. G. Looser 4300,
14-X-1940 (Herb. Looserianum, GH); Quebrada de Paihuano, 950 m. s.m.,
leg. Dr. Fco. Behn, 17-X-1949 (CONC).. Dpto. Ovalle, Tulahuen, ca. lat.
31001'S, 70044"W, leg. F. Geisse, X-1889 (SGO).

Prov. Aconcagua. Dpto. Petorca. Molle, X-1888 (SGO) (ISOTIPO: P.
foliosus Phil.).

a

3—POLYACHYRUS GAYI Remy

Remy in Gay, Flora Chilena, 3:372, 1847. Philippi, Anales Univ. Chile, 69:
266, Fig. 14, 1886 et Bot. Jahrb. 8:73, Lám. 2, Fig. 14, 1887. Reiche,
Anales Univ. Chile, 115:352, 1904 et Flora de Chile, 4:371, 1905.

Sufrútice decumbente, poco ramificado. Ramas de 30-50 cm de largo,
levemente estriadas, débilmente araneoso-glandulosas, poco hojosas. Hojas
amplexicaules, atenuadas en pseudopecíolo de 6-13 mm de largo, notable-
mente decurrentes, papiráceas, alternas, entrenudos de 10-14 mm de largo,
lámina de contorno lanceolado, de 30-50 mm de largo por 8-12 mm de ancho,
débilmente glanduloso-araneosas en la haz, densamente araneosas en el envés,
pinatilobadas; lóbulos 5-7 pares opuestos, subopuestos o alternos, simples,
triangulares, un tanto dirigidos hacia la base de la hoja, revolutos; aurículas
decurrentes, desiguales, la de mayor desarrollo decurre por el tallo como un
borde alado de hasta 35 mm de largo, la menor de 10-19 mm de largo.
Glomérulos 3-4, de 1,5-1,7 cm de diámetro, reunidos en pseudocorimbos laxos
sobre un raquis de 5-8 cm de largo. Brácteas del invólucro lampiñas. Corolas
rosadas.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.
Sufrútice de área muy reducida o endemismo exclusivo de las provincias
de Atacama y Coquimbo.

MATERIAL ESTUDIADO —CHILE. Costas de las provincias Septentrio-
nales, leg. C. Gay (SGO, F, GH, ISOTIPOS).

Prov. Coquimbo. Dpto. Serena. La Higuera, leg. Fco. Sgdo. Fonch 1886
(SGO). Dpto. Elqui. Valle de Elqui, Leg. Bridges 1418, 111-1842 (GH). Prov.
Coquimbo (SGO).

4 —POLYACHYRUS POEPPIGIT (Kunze ex Lessing)
Lessing subsp. poeppigu

Lessing, Linnaea 5:5, 1830.

Cephaloseris poeppigii Kunze ex Lessing, Linnaea 5:5, Figs. 6-9-10-11-12-13-14,
1830.

Polyachyrus poeppigii Lessing, Poeppig et Endlicher, Nov. Gen. Sp. Pl. 1:14,
tab. 23, 1835. Philippi, Anales Univ. Chile, 69:268, Fig. 17, 1886 et Bot.
Jahrb. 8:74, Lám. 2, Fig. 17, 1887.

ab

Polyachyrus poeppigii Kunze et Lessing, De Candolle, Prodromus, 7:53, 1838.
De Candolle in Delessert, Icon. Pl. 4:37, tab. 84, 1839. Remy in Gay,
Flora Chilena, 3:372, 1847. Reiche, Anales Univ. Chile 115:563, 1904
et Flora de Chile 4:371, 1905.

Polyachyrus auritus D. Don, Philos. Mag. 11:390, 1832. Guillemin, Arch. Bot.

2:466, (1833).

Polyachyrus decurrens Lag. ex DC., Prodromus 7:53, 1838.

Polyachyrus macrotis Philippi, linnaea 28:713, 1856.

Polyachyrus litoralis Philippi, Linnaea 28:714, 1856.

Polyachyrus calderensis Philippi, Anales Univ. Chile 69:271, Fig. 19, 1886 et
Bot. Jahrb. 8:76, Lám. 2, Fig. 19, 1887. Reiche, Anales Univ. Chile 115:
564, 1904 et Flora de Chile 4:372, 1905.

Polyachyrus tenuifolius Philippi, Anales Univ. Chile 69:271, Fig. 7, 1886 et
Bot. Jahrb. 8:77, Lám. 2, Fig. 7, 1887.

Polyachyrus poeppigiú Kunze ex Less. var. litoralis (Phil.), Reiche, Anales Univ.
Chile 115:564, 1904 et Flora de Chile 4:372, 1905.

Polyachyrus virgatus Johnston, Contr. Gray Herb. 85:132, 1929.

Sufrútice decumbente o escandente, ramoso. Raíz gruesa, profunda, le-
ñosa, monoaxial, sinuosa. Ramas teretes, de 50-120 cm de largo, lisas o leve-
mente estriadas, hojosas, glabras en la base, hacia el ápice moderadamente
glandulosas y araneosas. Hojas amplexicaules, alternas, crasas, entrenudos de
1,5-2,5 cm de largo, las inferiores atenuadas en pseudopeciolo, las superiores
abruptamente sésiles, de contorno oblongo, de 2,5-15 cm de largo por 1,5-5
cm de ancho, araneosas o glandulosas en la haz, araneosas a velutino-araneosas
en el envés, pinatisectas; segmentos 5-8 pares opuestos, subopuestos o alternos,
de contorno oblongo-lanceolado, de 7.525 mm de largo, revolutas, con 14
dientes o lóbulos profundos, anchos o lineares, generalmente mucronados;
aurículas grandes, orbiculares, enteras, de 1,5-3 cm de diámetro, menores en
las hojas inferiores, de nerviación pinado-reticulada, con yemas axilares albo-
lanosas. Glomérulos 1-3, de 1,8-2 cm de diámetro, dispuestos en pseudo-corimbos
sobre un raquis de 5-10 cm de largo. Brácteas del invólucro lampiñas. Corolas
rosadas con fuerte olor a vainilla.

En los ejemplares disecados, las hojas pierden el color verde y la textura
crasa, tornándose membranosas y de color castaño. Lo mismo sucede con la
parte superior de los tallos. Sólo en las flores frescas es posible apreciar el
olor intenso a vainilla.

Los sinónimos de R. A. Philippi, P. macrotis, P. litoralis, P. calderensis
y P. tenuifolius, fueron descritos por sobre la base de ejemplares que pre-
sentaban variación respecto al indumento y segmentación de la lámina, lo
que es hasta cierto punto justificable si se toma en consideración que los

77 2

individuos, a lo largo de la dilatada área de distribución de la especie, están
expuestos a las influencias de los más variados microclimas que, obviamente,
actúan sobre la morfología de los órganos vegetativos de las poblaciones locales.
P. auritus D. Don (1832) se podría explicar por la proximidad de la publi-
cación de P. poeppigii por Lessing (1830) y por lo confuso del problema
nomenclatural de la época (Cap. Historia).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.

Sufrútice, integrante del matorral desértico costero y matorral costero,
desde el sur de la Prov. de Antofagasta hasta la de Curicó. Las formas más
exhuberantes habitan en aquellos lugares húmedos y protegidos de las que-
bradas vecinas al mar.

MATERIAL ESTUDIADO. CHILE. Prov. Antofagasta. Dpto. Taltal: Que-
brada de Paposo, Agua Perales, leg. M. Ricardi 2605, 24-1X-1953 (CONC);
Vicinity of Paposo, hill directly back of Punta Grande, ca. lat. 25907'S, leg.
Ivan M. Johnston 5228, 29-X1-1925 (GH); ca. 10 Km east of Taltal, quebrada
Taltal, 100-200 m s.m., leg. C. R. Worth and J. L. Morrison 15790, 12-X-1938
(UC, GH).

Prov. Atacama. Dpto. Chañaral; Gravelly benches and rocky hillside
near Aguada Grande, leg. I. Johnston 5795, 10-XILf-1925 (GH, TIPO: P.
virgatus Johnston, US); Fogbathed crest of hills near Barquito, leg. 1. Johnston
4801, 29-X-1925 (GH, US, PARATIPOS: P. virgatus Johnston). Dpto. Copiapó;
Caldera (SGO, TIPO: P. calderensis Phil.); Caldera (GH); Carretera Pana-
mericana, 6 Km al norte de Paipote, 500 m s.m., leg. Ricardi-Marticorena-
Matthei 1467, 24-X-1965 (CONC); Morro de Copiapó, west-southwest of
Caldera, 100 m s.m., leg. C. R. Worth and J. L. Morrison 16170, 21-X-1938
(UC, GH). Dpto. Freirina; Camino de Chañaral de Aceituna a Bahía Carrizal,
Km 6, leg. Marticorena-Rodríguez-Weldt 1840, 23-X-1971 (CONC); Valle del
Huasco, leg. F. Philippi, IX-1889 (SGO, TIPO: P. tenuifoltus Phil.); Huasco,
leg. F. Philippi, 1X-1885 (SGO).

Prov. Coquimbo. Dpto. Serena; Camino de Carretera Panamericana a
Choros Bajos, Km 13, leg. Marticorena-Rodríguez-Weldt 1686, 21-X-1971
(CONC); Cuesta Buenos Aires, Minerales El Tofo, 100 m s.m., leg. Dr. Fco.
Behn, 2-X1-1948 (CONC); Quebrada Honda, leg. C. Jiles 4013, 17-XI-1961
(H. Jiles, CONC); La Serena, leg. R. A. Philippi, X-1878 (SGO); La Serena,
X-1878 (SGO). Dpto. Coquimbo. Coquimbo, ca. 50 m s.m., leg. E. Werdermann
1817, 12-X11-1927 (B). Dpto. Ovalle: Camino a la orilla del mar, leg. C. Jiles
1420, 19-1X-1949 (H. Jiles, CONC); Cuesta de Punitaqui, leg. Marticorena-
Matthei 374, 18-X-1963 (CONC); Talinay, leg. C. Jiles 2052, 18-1X-1951 (H.
Jiles, CONC). Dpto. lllapel: 44-46 Km from Illapel, on road to Huentelauquén,

NO. ==

150 m s.m., leg. C. R. Worth and J. L. Morrison 16619, 20-X1-1938 (UC, GH);
Carretera Panamericana, 8 Km al norte de Los Vilos, leg. Marticorena-Matthei
108, 12-X-1963 (CONC); Pichidangui, leg. O. Correa 23, 21-X-1958 (SGO). Prov.
Coquimbo, leg. W. H. Harvey, VII-1856 (GH).

Prov. Aconcagua. Dpto. Petorca: Los Molles, leg. L. Landbeck, XI-1862
(SGO); Los Molles, XI-1862 (SGO); Zapallar, Monte Bravo, leg. Dr. K. Behn,
27-X11-1916 (CONO).

Prov. Valparaíso. Dpto. Valparaíso: La Ventana, leg. Sparre 11000, 16-
XI-1954 (CONC); Quintero, Playa de los Enamorados, leg. C. Junge, 9-XI-
1942 (CONC); Concón, leg. Dr. K. Behn, 5-XI-1933 (UC); Concón, leg. A. L.
Cabrera 11461, 7-X-1953 (CONC); Monte Mar, rocas de las Focas, leg. Dr.
K. Behn, 5-XI-1933 (CONC); Near Monte Mar, on road from Viña del Mar
to Concón, rocky point near beach, 5 m s.m., leg. James West 3954, 27-XI-
1935 (UC, GH); Curauma, leg. R. A. Philippi, X-1883 (SGO); Valparaíso,
leg. King, 1X-1830 (GH); Valparaíso, leg. Germain (SGO, TIPO: P. macrotis
Phil.).

Prov. Santiago. Dpto. San Antonio; Dunas de las Cruces, leg. Pfister-
Ricardi, 19-X-1950 (CONC); San Antonio, leg. Reiche 1897 (SGO); al sur de
Llolleo, leg. G. Looser 1449, 7-X11-1930 (GH); San Antonio, leg, Germain
(SGO).

Prov. Curicó. Dpto. Mataquito. Llico, leg. L. Landbeck 1120, XII[-1861
(SGO).

Sin localidad: CHILE. Se halla en las zonas costeras de las provincias
de Santiago y Valparaíso (SGO, TIPO: P. litoralis Phil.).

4a.— POLYACHYRUS POEPPIGIT (Kunze ex Lessing) Lessing
subsp. MULTIFIDUS (D. Don) stat. nov.

Polyachyrus multifidus D. Don, Philos. Mag. 11:390, 1832. Guillemin, Arch.
Bot. 2:466, 1833.

Polyachyrus niveus auct. div. (Remy in Gay, 1847; Philippi, 1886; Reiche, 1904)
non DC. 1838.

Polyachyrus sanromani Philippi, Anales Univ. Chile, 69:270, Fig. 6, 1886 et
Bot. Jahrb. 8:76, Lám. 2, Fig. 6, 1887. Reiche, Anales Univ. Chile, 115:
566, 1904 et Flora de Chile, 4:374, 1905).

Polyachyrus selinoides Reiche, Anales Univ. Chile, 115:566, 1904 et Flora de
Ghile,4:574,-1905.

Polyachyrus oblongiflorus Koster, Blumea, 5:675, Figs. a-b, 1945.

«Bis

Sufrútice decumbente, ramoso, de 40-80 cm de altura. Raíz monoaxial,
leñosa, sinuosa. Ramas teretes, hojosas, subestriadas, glabras en la base, paula-
tinamente velutino-araneosa hacia el ápice. Hojas alternas, entrenudos de
5-20 mm de largo, atenuadas en pseudopeciolo, de contorno oblongo, de 4-
11 cm de largo por 1,5-3,5 cm de ancho, araneosas a velutino-araneosas; aurí-
culas orbiculares enteras, de 5-20 mm de ancho; hojas basales y medianas
pinatisectas, con 6-8 pares de segmentos más o menos opuestos, revolutos, con
3-5 dientes o lóbulos poco profundos; hojas superiores bipinatisectas, con 6-8
pares de segmentos lineares; segmentos con 4-5 lóbulos profundos, linear-lanceo-
lados, revolutos.

Difiere de la especie típica por ser de menor talla y por la densidad del
indumento de la parte superior del tallo, por las hojas apicales bipinatisectas,
semiamplexicaules y con aurículas de menor tamaño.

La falta de tricomas que se observa en la base de las ramas de muchos
individuos fue posiblemente lo que indujo a describir a Philippi P. sanroman,
a Reiche su nueva entidad P. selinoides y a Koster P. oblongiflorus. P. niveus
fue una entidad nomenclatural introducida por De Candolle (1838) que la
atribuyó a Lagasca como tipo para crear el género.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.

Habita en el matorral costero de la provincia de Atacama, alcanzando su
mayor densidad en el Dpto. de Copiapó, en donde penetra por el valle de
Copiapó hasta tomar contacto con el matorral desértico central.

MATERIAL ESTUDIADO. CHILE. Prov. Antofagasta. Dpto. Taltal. Que-
brada Changos, leg. M. Ricardi 2568, 21-1X-1953 (CONC).

Prov. Atacama. Leg. W. Geisse (SGO). Dpto. Chañaral. Chañaral que-
bradas, leg. M. Ricardi 2253, 27-1X-1952 (CONC). Prov. Atacama, Desierto de
Atacama, leg. San Roman (SGO, TIPO: P. sanromant Phil.). Dpto. Copiapó:
Camino de Estancia Castilla a Bahía Salado, Km 17, leg. Ricardi-Marticorena-
Matthei 1263, 13-X-1965 (CONC); Carretera Panamericana, entre Copiapó y
Vallenar, Km 38, leg. Ricardi-Marticorena-Matthei 1508, 14-X-1965 (CONC);
Camino de Caldera a Chañaral, Km 12, al norte de Caleta Obispito, leg.
Ricardi-Marticorena-Matthei 1303, 14-X-1965 (CONC); Cerro Bandurria, cerca
de Chañarcillo, X-1888 (SGO); Bandurrias, cerca de Chañarcillo, leg. W.
Geisse (SGO); Bandurrias, X-1888 (SGO); Carretera Panamericana, 18 Km al
norte de Paipote, 500 m s.m., leg. Ricardi-Marticorena-Matthei 1458, 24-X-
1965 (CONC); Copiapó, leg. José Sgdo. Rivera 1117c (SGO); Piedra Colgada,
leg. R. A. Philippi, IX-1885 (SGO); Caldera, leg. R. A. Philippi, XI1-1853
(SGO); Caldera, IX-1876 (SGO); Bahía Salado, leg. Ricardi-Marticorena-
Matthei 1277, 13-X-1965 (CONC); Civinity of Caldera, leg. Thos. Morong 1151,

Ay a

IX-X-1890 (GH); Monte Amargo, Copiapó a la costa, 27921'S, 70943'W, leg.
F. Philippi, IX-1885 (SGO, SINTIPO: P. selinoides Reiche). Dpto. Freirina:
Quebrada de Carrizal Bajo, leg. Ricardi-Marticorena 4433/818, 17-1X-1957
(CONC); Camino a Carrizal Bajo, Km 44, 4 Km más abajo de Canto del Agua,
leg. Ricardi-Marticorena-Matthei 1517, 26-X-1965 (CONC); Camino a Carriza-
lillo por Quebrada de Chañaral, 9 Km S.O. de la punta del camino a El
Morado, 200 m sm, leg. Marticorena-Rodríguez-Weldt 1810, 23-X-1971
(CONC); Quebrada El Morado, bifurcación camino El Morado-Carrizalillo,
300 m s.m., leg. Marticorena-Rodríguez-Weldt 1872, 23-X-1971 (CONC); Huas-
co, ca, 200 m s.m., leg. E, Werdermann 1820, XI-1927 (B).

5.—POLYACHYRUS FUSCUS (Meyen) Walpers

Walpers in Meyen, Nov. Actorum Acad. Caes, Leop.-Carol. Nat. Cur. 19,
suppl. 1:288, 1843.

Walpers, Rep. Bot. Syst. 6:321, 1846.

Diaphoranthus fuscus Meyen, Reise um die Erde, 1:406, 1864.

Polyachyrus fuscus Walpers, Remy in Gay, Flora Chilena 3:373, 1847. Weddell,
Chl. And. 1:56, 1856.

Polyachyrus fuscus Meyen, Philippi, Anales Univ. Chile, 69:267, Fig. 15a-b,
1886 et Bot. Jahrb. 8:74, Fig. 15, 1887.

Polyachyrus fuscus Meyen et Walpers, Reiche, Anales Univ. Chile, 115:352,
1904 et Flora de Chile, 4:371 (1905).

Polyachyrus roseus Philippi, Viage Des. Atac. 202, 1860. Philippi, Anales
Univ. Chile, 69:269, Figs. 5 y 10, 1886 et Bot. Jahrb. 8:75, Lám. 2, Figs. 5
y 10, 1887.

Polyachyrus fuscus Meyen et Walpers var roseus (Phil.) Reiche, Anales Univ.
Chile, 115:352, 1904 et Flora de Chile, 4:371, 1905.

Polyachyrus nesites Johnston, Contr. Gray Herb. 95:85, pl. 7, Fig. 4, 1931.

Sufrútice decumbrente, leñoso en la base, ramoso. Raíz gruesa, pivotante,
leñosa. Ramas teretes, de 30-80 cm de largo, densamente hojosas, aspero-
elandulosas. Hojas semiamplexicaules, abruptamente sésiles, carnosas, alternas,
entrenudos cortos, en el tercio inferior de 4-6 mm de largo, hacia el ápice
hasta de 25 mm, lámina de contorno linear oblongo, de 4-7 cm de largo por
1,2-2,1 cm de ancho, densamente glandulosas en la haz, velutino-araneosas a
niveo-lanosas en el envés, pinatipartidas; segmentos 6-10 pares, opuestos, sub-
opuestos o alternos, triangular-oblongos, fuertemente revolutos, digitiformes,
desigualmente sinuados, provistos de un lóbulo basal auriculiforme; aurículas
semiorbiculares, de 4-11 mm de ancho, a veces más pequeñas e inconspicuas,

AN

fuertemente revolutas, desigualmente sinuadas. Glomérulos 1-3, de 1,5-1,7 cm
de diámetro, dispuestos en pseudocorimbos laxos sobre un raquis de 8-11 cm
de largo. Brácteas del invólucro lampiñas. Corolas rosadas.

Caracteriza a la especie las hojas carnosas, lo que se debe no a una carac-
terística especial del mesófilo, sino que a la abundancia de glándulas en la
haz y a su margen fuertemente revoluto. Es igualmente típica la morfología
de los segmentos y el lóbulo basal que representa cada uno de ellos.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.

Sufrútice del desierto costero y matorral costero xerofítico que se extiende
desde el norte de la provincia de Antofagasta hasta el sur de la provincia
de Coquimbo, frecuentemente asociado con especies carnosas de Nolanáceas.
(Fig. 8, D).

Es interesante hacer notar que P. fuscus habita muchas veces en las
vecindades de guaneras, lugares donde anida Phalacrocorax bougainville:
(guanay), lo que permite deducir que la migración de estas aves hace posible
la distribución de la especie tanto en la franja costera como en los islotes ve-
cinos a ella. Esto explicaría su presencia en las islas Sangallan de Perú, pseudo-
endemismo que indujo a I. M. Johnston a describir P. nesites, distante a más
de 1.000 Km de su centro de área.

MATERIAL ESTUDIADO. PERU. Dpto. Ica. Prov. Pisco. Sangallan Island,
leg. Robert Cushman Murphy 3467, 27-XI-1919 (GH, TIPO: P. nesites
Johnston).

CHILE. Prov. Tarapacá. 11-1888 (SGO).

Prov. Antofagasta. Dpto. Tocopilla: Cuesta Barriles, Leg. Ricardi-Marti-
corena-Matthei 1076, 22-X-1964 (CONC); Cuesta Barriles, leg. M. Ricardi 3029,
28-1X-1954 (CONC). Dpto. Antofagasta: Quebrada de la Chimba, leg. A. L.
Cabrera 11345, 27-IX-1953 (CONC); Quebrada de la Chimba, leg. M. Ricardi
3044, 1-X-1954 (CONC); Base of Hills just southeast of la Chimba, leg. Ivan
M. Johnston 3656, 19-X-1925 (GH); Blanco Encalada, ca. 750 m s.m., leg.
Harding, VII-1923 (GH). Dpto. Taltal: Paposo, leg. Verónica Behn, 8-11-1960
(CONC); Paposo, leg. Ana Torres 58, 15-X1-1959 (SGO); Quebrada de San
Ramón, north of Taltal, ca. lat. 25021'S, leg. Ivan M. Johnston 5154, 26-XI-
1925 (GH); Quebrada Peralito, leg. M. Ricardi 2466, 16-1X-1953 (CONC);
Taltal, leg. Dr. L. Darapsky 1889 (SGO); Taltal, Quebrada de Taltal, leg.
Ivan M. Johnston 2869, 9-IX-1936 (SGO); Taltal, Quebrada de Taltal, 9-1X-
1936 (GH); Taltal, leg. G. Montero, 18-X-1960 (SGO); Taltal, Agua del Loro,
leg. G. Montero, 10-1X-1936 (SGO); Taltal, Quebrada de los Changos, leg. G.
Montero, 10-1X-1936 (SGO); Taltal, Quebrada de Los Changos, leg. M. Ricardi

Pe 7: TIO

2567, 21-1X-1953 (CONC); Vicinity of Aguada de Cardón, ca. lat. 24045'S, leg.
Ivan M. Johnston 5289, 30-X1-1925 (GH); Quebrada Cachina, camino a Esme-
ralda, leg. Ricardi-Marticorena 4626/1011, 14-1X-1958 (CONC).

Prov. Atacama. Dpto. Chañaral: Vicinity of Puerto de Chañaral, hills
back of El Barquito, ca. lat. 26023'S, leg. Ivan M. Johnston 4880, 29-X-1925
(GH); Chañaral, leg. A.A. Beetle 26159, 23-11-1939 (UC, GH); Barquito har-
bour near Chañaral, leg. James West 3876, 18-X1-1935 (GH, UC); Zona litoral
de Chañaral de las Animas (SGO, SINTIPO: P. roseus Phil.); Camino Chañaral-
Caldera, Km 13, leg. Ricardi-Marticorena-Matthei 1908, 25-X-1964 (CONC).
Dpto. Copiapó: 9 Km al Norte de Salado, leg. Ricardi-Marticorena 4615/1000,
14-1X-1958 (CONC); Camino de Caldera a Chañaral, Km 30, leg. Marticorena-
Rodríguez-Weldt 1891, 24-X-1971 (CONC); Quebrada del León, ca. 20 Km
North of Caldera, leg. C. R. Worth and J. R. Morrison 16152, 20-X-1938 (UC,
GH); Caldera, leg. L. Chiang, 11-1951 (CONC); Caldera, leg. Dr. E. Werder-
mann 380, 1X-1924 (UC, GH, HBG); Caldera, X-1887 (SGO); Caldera, leg.
Ivan M. Johnston 5058, 22-X1-1925 (GH); Caldera, VIII-1886 (SGO); Caldera,
leg. G. Hartmann, 27-V1II-1960 (CONC); Caldera, leg. Geisse, VI11-1887 (SGO);
Caldera, leg. Geisse, X-1886 (SGO); Bandurrias, leg. W. Geisse 1885 (SGO);
Copiapó, leg. Dr. Meyen año 1833 (FOTO, CONC). Dpto. Freirina: Huasco,
leg. G. Montero 7603, 18-1X-1966 (CONC); Huasco, leg. G. Montero 7667,
19-1X-1966 (CONC).

Prov. Coquimbo. Dpto. Serena. Bahía frente a Cuesta de Buenos Aires,
leg. Dr. Fco. Behn, 2-X1-1948 (CONC). Dpto. Ovalle: Fray Jorge, leg. C. Jiles
3748, 10-X1-1960 (H. Jiles, CONC); Fray Jorge, leg. C. Muñoz B-74, 26-IX-
1935 (SGO). Dpto. Hlapel (SGO).

6.— POLYACHYRUS SPHAEROCEPHALUS D. Don

Don, D., Trans. Lin. Soc. 16:229, 1830, Lessing, Syn Gen. Comp., p. 400, 1832.

Bridgesia echinopsoides Hooker, Bot. Mis. 2:222, tab. 92, 1831.

Polyachyrus bridgesii Poeppig et Endlicher, Nov. Gen. Sp. Pl. 1:14, 1835.

Polyachyrus niveus Lag. ex De Candolle, Prodromus, 7:53, 1838. De Candolle,
Coll. Mém. 9:37, Fig. 15, 1838.

Polyachyrus glandulosus Nutall, Trans. Am. Philos. Soc. n.s. 7:423, 1841.
Walpers, Rep. Bot. Syst. 2:681, 1843,

Polyachyrus villosus Weddell, Chl. And. 1:56, Fig. 13A, 1856.

Polyachyrus uniflorus Sch. Bip. Pollichia, 18-19:186, 1861.

Polyachyrus tarapacanus Philippi, Anales Univ. Chile, 69:267, Fig. 16, 1886,
et Bot. Jahrb. 8:74, Lám. 2, Fig. 16, 1887. Reiche, Anales Univ. Chile,
115:565, 1904 et Flora de Chile, 4:374, 1905.

pun

Sufrútice decumbente o escandente, ramoso. Raíz gruesa, profunda, leñosa.
Ramas de 30-70 cm de largo, teretes, lisas, hojosas en la región inferior y
media, glandulosas, glanduloso-araneosas o ceniciento araneosas. Hojas em-
plexicaules, alternas, entrenudos de 1,5-3 cm de largo, las inferiores atenuadas
en pseudopeciolo de hasta 1 cm de largo, las superiores abruptamente sésiles,
de contorno oblongo-lanceolado, de 5-15 cm de largo por 1,4-5,5 cm de ancho,
densamente glandulosas, araneosas a velutino-araneosas en la haz, niveo-lanosas
en el envés, pinatifidas, con 5-8 pares de segmentos opuestos, subopuestos O
alternos, triangulares hasta oblongo, mucronados, revolutos, con 2-3 dientes
más o menos profundos, mucronados; aurículas orbiculares, de 1-4 cm de
diámetro, dentadas, mucronadas, revolutas. Glomérulos 1-2, de 1,8-2,3 cm de
diámetro, dispuestos en pseudocorimbos laxos sobre un raquis de 8-15 cm de
largo. Brácteas del invólucro lampiñas o moderadamente glandulosas, corolas
rosadas con olor a vainilla.

La especie es polimorfa en cuanto a la densidad y composición del in-
dumento, pero la morfología de la hoja (división del margen, magnitud,
venación, etc.) es constante en todo el material estudiado. De tal manera que
la abundancia de sinónimos se debe, por una parte, a diferencias en el in-
dumento y, por otra, a confusión en cuanto a la localidad típica se refiere.
Así, en el Herbario de De Candolle del Jardín Botánico de Ginebra existe
un ejemplar con la etiqueta original de De Candolle, determinado como P.
niveus recolectado por Née, que indudablemente es el mismo que cita en
Prodromus 7:53, y que corresponde plenamente al taxon válido, P. sphaero-
cephalus D. Don, recolectado por Ruiz et Pavón en Perú. El error de atribuir
P. niveus Lag. ex DC. a Chile por De Candolle, desde una época muy tem-
prana (1838) creó errores de interpretación en los Botánicos posteriores (Cap.
Historia).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.

Se extiende por el Norte desde el Departamento de Lima, Perú, hasta la
provincia chilena de Tarapacá, Departamento de Iquique, como un compo-
nente de los matorrales preandinos y andinos sobre los 100 m s.m., en terri-
torio chileno trepa hasta los 4000 m s.m. En las localidades expuestas y áridas
adopta un hábito decumbente y en las protegidas y húmedas es escandente.

MATERIAL ESTUDIADO. PERU. Dpto. Lima. Prov. Canta: Culluay (Valle
de Canta) (GH); Huaros, 3100-3500 m s.m., leg. Francis W. Pennell 14711,
23-VI-1925 (GH). Prov. Huarochiri: Chicla 4000 m s.m., leg. J. Ball, 21-IV-
1882 (GH); Chicla, ca. 150 Km east of Callao, leg. Caec. et Ed. Seler 238,
1910 (GH, B); Chicla, 3000 m s.m., leg. O. Velarde 1710, 5-XI-1949 (LP);

Infiernillo, 3300 m s.m., leg. A. L. Cabrera 10891, 15-XI1-1951 (LP); Infier-

ALAN

nillo, 53250 m s.m., leg. Y. H. Goodspeed, H. E, Stork, O. B. Horston 11606,
22-1V-1939 (GH); Matucana, 2600 m s.m., leg. Macbride and Featherstone 333,
IV-1922 (GH); Alrededores de Santiago de Anchucaya al N.O. de Huarochiri,
leg. Emma Cerrate 1906, 15-V-1953 (LP); Hillsides above Sta. Eulalia, 1200
m s.m., leg. T.H. Goodspeed 33096, IV-1942 (UC, GH); San Mateo, leg.
Mattheus 641, VIT (GH); Dpto. Lima. Rio Blanco, 3500 m s.m., leg. A. L.
Cabrera, H. A. Fabris 13441, 15-V-1958 (LP).

Dpto. Junin. El Ingenio, el Palca, leg. Juan Isern 374, 25-VI1-1863 (LP).

Dpto. Ayacucho. Prov. Lucanas. Nasca-Puquio, road across canyon from
Pachan, 3100 m s.m., leg. P. Hutchison 1256, 10-1X-1957 (UC, M.) Prov. Pa-
rinacochas, Coracora, 2900 m s.m., leg. A. Weberbauer 5795 (GH).

Dpto. Arequipa, leg. A. E. Douglas, 1892 (GH). Prov. Arequipa: Chiguata,
3100 m sm. 25-VII-1949 (Herb. Vargas); Southern Slopes of Chachani
Mountain, North of Arequipa, 3000 m s.m., leg. Mr. y Mrs, F. E. Hinkley 49,
11-1920 (GH); Alrededores de Puquina, 3400 m s.m., leg. C. Vargas 019362,
21-IV-1967 (Herb. Vargas).

Dpto. Moquegua. Prov. Moquegua. Saylapa near Carumas, 3300 m s.m.,
leg. A. Weberbauer 7336, 3-111-1925 (US).

Dpto. “Pacna. Prov. “Tacna. Lomas de “Toquepala, 3400 m s.m.. leg. C.
Vargas 13067, 30-XI-1959 (Herb. Vargas).

CHILE. Prov. Tarapacá. Dpto. Arica: Camino Zapahuira a Putre, Km 25,
en quebrada a orillas de riachuelo, 3450 m s.m., leg. Ricardi-Weldt-Quezada
202, 5-V-1972 (CONC); Putre, 3500 m s.m., leg. R.P.G. Kuschel, 5-X11-1946
(SGO): frente a Socoroma, en quebrada surcada por riachuelo, 3300 m s.m.,
leg. Ricardi-Weldt-Quezada 186, 5-V-1972 (CONC); Esquiña, 3200 m s.m., leg.
R.P., 1-1898 (SGO); Camino a Chapiquiña, quebrada frente a la Central Hidro-
eléctrica, 3400 m s.m., leg. Ricardi-WeldtQuezada 285, 8-V-1972 (CONC);
Chapiquiña, cerca de Endesa, 3000 m s.m., leg. O. Zoellner 4048, 28-1-1970
(CONG). Dpto. Iquique. Usmagama, 300 m s.m., leg. F. Philippi, 11-1885 (SGO)
(TIPO: P. tarapacanus Phil.). Prov. Tarapacá (CONC); Noasa-Parca, ca. 3000
m s.m., leg. E. Werdermann 1414, 111-1926 (B).

Prov. Antofagasta. Dpto. Loa: Sico, leg. R.P., X11-1897 (SGO); Quebradas
de los Baños de Puritama, 3400 m s.m., leg. Ricardi-Weldt-Quezada 348, 13-
V-1972 (CONC).

(FOTOTIPO): P. niveus Lag. ex DC.), leg. Née (CONC, GH).

(FOTOTIPO: P. uniflorus Sch. Bip.), leg. Haenke (LP, GH).

sE

7.—POLYACHYRUS CINEREUS nov. sp.

Suffrutex ramosus, decumbens, basi lignosa, dense velutino-araneosus ob-
tectus. Radix lignosa. Caulis teres, laevis, pluriramibus brevibus multifolio-
sisque axillaribus munitis. Foliis minute auriculatis, amplexicaulibus, alternis,
densis, sessilibus, anguste oblonguis, 25-50 mm longis, 5-10 mm latis, pinnati-
lobatis; lobulis 4-5-jugis, integris, oppositis, obtuse-triangularibus marginibus
revolutisque. Inflorescentia glomeruliformis, apice ramosum solitaria, 16-19 mm
diam.; rachis 5-16 cm longa. Capitulae biflorae; bracteis involucratibus 5, gla-
bris. Flores roseis, bilabiati. Pappus albus, uniseriatus. Achaenia fertile cylin-
dracea, hispidiuscula, ca. 1 mm longa.

Sufrútice decumbente, leñoso en la base, ramoso. Raíz leñosa, profunda,
pivotante, sinuosa. Ramas de 25-40 cm de largo, teretes, lisas, densamente
velutino-araneosas, con mumerosas ramificaciones secundarias cortas y muy
hojosas. Hojas amplexicaules, sésiles, linear-oblongas, de 2,5-5 cm de largo
por 0,5-1 cm de ancho, alternas, entrenudos de 1-1,5 cm de largo, araneosas
a ceniciento-araneosas en la haz, albo-lanosas en el envés, pinatilobadas, ló-
bulos 4-5 pares, enteros, generalmente opuestos, obtuso-triangulares, revolutos;
aurículas pequeñas, redondeadas, de 3-6 mm de diámetro. Inflorescencias glo-
meruliformes, de 1,6-1,9 cm de diámetro, solitarias, raquis de 5-10 cm de largo;
receptáculo del glomérulo albo-lanoso, con filarias subuladas de 3,5 mm de
largo, glabras. Capítulos bifloros; brácteas del invólucro 5, lampiñas, la exterior
de 3,5 mm de largo con callo giboso en la mitad inferior del dorso, las res-
tantes lineal-lanceoladas de 3-3,4 mm de largo. Corolas bilabiadas, rosadas;
labio exterior tridentado, revoluto, de 2 mm de largo, el interior bífido, de
1,7 mm de largo. Aquenio aovado, hispidiusculo, el de la primera flor, fértil,
de 1 mm de largo por 0, mm de ancho, coronado por un vilano de largo
desigual, más corto que el invólucro, el de la segunda flor, estéril, coronado
por un vilano más largo que el invólucro. Vilano uniseriado, palaceo-plumoso,
de color blanco.

Caracteriza a la nueva especie el denso indumento velutino-araneoso que
cubre a todos los órganos vegetativos, las ramas secundarias cortas y ricamente
hojosas y en general la morfología foliar.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA.
Sufrútice endémico del matorral xerofítico costero de la zona limítrofe
de las provincias de Antofagasta y Atacama.

MATERIAL ESTUDIADO. CHILE. Prov. Antofagasta. Dpto. Taltal: Vicinity

of Aguada de Miguel Diaz, ca. lat. 24025'S, leg. Ivan M. Johnston 5335, 1-4-
XI11-1925 (GH); Región about Aguada Cachina (waterhole in Quebrada Ca-

a

china, ca. 6 Km in land from Caleta Esmeralda), ca. lat. 25953'S, leg. Ivan M.
Johnston 5726, 14-15-X11-1925 (GH, TYPUS).

Prov. Atacama. Dpto. Chañaral: Vicinity of Aguada Grande (“Cachinal
de la Costa” of Philippi), near Antofagasta-Atacama provincial boundary, ca.
lat. 26902'S, leg. Ivan M. Johnston 5796, 16-18-XII-1925 (GH); Vicinity of
Aguada Grande (“Cachinal de la Costa” of Philippi), near Antofagasta-Atacama
provincial boundary, ca. lat. 26002'S, leg. Ivn M. Johnston 5797, 16-18-XII-
1925 (GH); Chañaral, hills to north, 100 m s.m., leg. A.A. Beetle 26135,
22-11-1939 (UC, GH).

ESPECIE DUDOSA

Polyachyrus nivalis Phil., Anales Univ. Chile, 69:269, Fig. 9, 1886 et Bot.
Jahrb. 8:75, Lám. 2, Fig. 9, 1887, “Cordillera de Santiago al límite de
las nieves eternas.

Por distribución y por hábito que exhibe la escasa muestra típica hasta
ahora conocida (SGO), es prácticamente imposible que fuera recolectada en
la cordillera de Santiago. Con seguridad se trata de una confusión de localidad.
Por insuficiencia del material no se ha podido dilucidar si se trata de una
forma perteneciente a P. poeppigii o P. fuscus.

BIBLIOGRAFIA GENERAL

La bibliografía especial está indicada en el capítulo Historia
y en el tratamiento sistemático del género y las especies.

BENTHAM, G.
1873 En G. Bentham et J. D. Hooker, Genera Plantarum II. Londres.
CASSINI, A.
1834 Opuscules Phytologiques, II. Paris.
CASTRI, E. DI
1968 Esquisse Ecologique du Chili. Biologie de L'Amerique Australe,
Vol. 4. Francia.
FONT OUER, P.
1953 Diccionario de Botánica.
FUENZALIDA, H.
1950 Biogeografía. Geografía Económica de Chile. Vol. 1. Corpora-
ción de Fomento de la Producción. Santiago. Imp. Univ. Chile.

7

HOFFMANN, O.
1893 En Engler y K. Prantl, Die Naturlichen Pflanzen-familien,

Vol 4(5). Leipzig.

HOOKER, J. and D. JACKSON
Index Kewensis.

LANJOUW, J.
1961 International Code of Botanical Nomenclature. Utrecht-

Netherlands.

LANTOUW, J. and F. A. STAFLEU
1954 Index Herbarioum. Part 1. The Herbaria of the World. Se-

cond Edition.

PARRA, O. y C. MARTICORENA
1972 Granos de polen de Plantas Chilenas. 1. Compositae-Mutisieae
Gayana, Botánica 21, Universidad de Concepción.

STEUDEL, sE: Ge
1840 Nomenclator Botanicus. Editio Secunda. 2 Vol. Stuttgartiae et
Tubingac.

WEBERBAUER, H.
1945 El mundo vegetal de los Andes Peruanos. Lima.

WILELEIS, G. ].
1966 A Dictionary of the Flowering Plants and Ferns. Seventh
Edition. Cambridge University Press. 1214 p.

Po

INDICE DE COLECTORES

BALL

21-1V-1882, sphaerocephalus

BEETLE
26135, cinereus
26159, fuscus

BEEN," F.
17-X-1949, carduoides
2-X1-1948, fuscus
2-X1-1948, poeppigu

BEHN, K.
27-XI1-1916, poeppigi
5-X1-1933, poeppigú
5-X1-1933, poeppigúu

BEHN, V.
8-11-1960, fuscus

BRIDGES
1418, gayi

CABRERA

11345, fuscus

11461, poeppigu
10891, sphaerocephalus

CABRERA-FABRIS
13441, sphaerocephalus

CERRATE
1906, sphaerocephalus

CHIANG
11-1951, fuscus

CORREA
23, poeppigu

DARAPSKY
1889, fuscus

DOUGLASS
1892, sphaerocephalus

FERREYRA

2518, annuus

FONCH
1886, gayi

GAY

Chile, gay:

GEISSE

1865, carduoides

1889, carduoides

Chile, carduoides

1885, fuscus

VIII1-1887, fuscus

X-1886, fuscus

Chile, poepigú subsp. multifidus
Badurrias, poeppigi subsp. multifidus
GERMAIN

Valparaíso, poeppigu

San Antonio, poeppigú

GOODSPEED
33096, sphaerocephalus

GOODSPEED-STORK-HORTON
11606, sphaerocephalus

GUENTHER
48, annuus
48a, annuus

GULING
Chile, carduoides

HARDING
VII-1923, fuscus

HARTMANN
27-VIL-1960, fuscus

HARVEY
VII-1856, poeppigii

HINKLEY
49, sphaerocephalus

HUTCHISON
1256, sphaerocephalus

ISERN
374, sphaerocephalus

JILES

37481, fuscus
1420, poeppigi
2052, poeppigt
4013, poeppigi

JAFFUEL
1001, annuus

JOHNSTON
3539, annuus
3583, annuus
5334, annuus
4700, carduoides
5335, cinereus

5726, cinereus
5796, cinereus
5707, cinereus
3656, fuscus
4800, fuscus
5058, fuscus
5154, fuscus
5289, fuscus
2669, fuscus
5228, poeppigii
5795, poeppigii
4801, poeppigt

JUNGE
9-XI-1942, poeppigtt

KING
IX-1830, poeppigi

KUSCHEL
5-XI1-1946, sphaerocephalus

LANDBECK
1120, poeppigu

LOOSER
4300, carduoides
1449, poeppigu

MACBRIDE-FEATHERSTONE
333, sphaerocephalus

MARTICORENA-MATTHEI
108, poeppigti
374, poeppigi

MARTICORENA-MATTHEI-
QUEZADA
527, carduoides

MARTICORENA-RODRIGUEZ-
WELDT

1891, fuscus

1894, poeppigti subsp. multifidus
1686, poeppigti

1840, poeppigu

17

1810, poeppigú subsp. multifidus RICARDI
1782, poeppigi subsp. multifidus 2559, annuus
2466, fuscus

MEYEN 2567, fuscus
1833, fuscus 3029, fuscus

3044, fuscus
MONTERO 2253, poeppigii subsp. multifidus
10-1X-1936, fuscus 2568, poeppigú subsp. multipidus
10-1X-1936, fuscus 2605, poeppigti
18-X-1960, fuscus
7603, fuscus RICARDI-MARTICORENA
7667, fuscus 4626/1011, fuscus

4615/1000, fuscus :
MORONG 4433/818, poeppigi subsp. multifidus

1151, poeppigú subsp. multifidus
RICARDI-MARTICORENA-

MUÑOZ MATTHEI
B-74, fuscus 1241, annuus
656, carduoides
MURPHY 1482, carduoides
3467, fuscus 1076, fuscus
1098, fuscus
ORTEGA 1277, poeppigit subsp. multifidus
IX-1876, carduoides 1263, poeppigi subsp. multifidus
1303, poeppigi subsp. multifidus
PENNELL 1458, poeppigii subsp. multifidus
14711, sphaerocephalus 1508, poeppigi subsp. multifidus
1517, poeppigti subsp. multifidus
PFISTER-RICARDI 1467, poeppigú
19-X-1950, poeppigis
RICARDI-WELDT-
PHILIPPI, F. QUEZADA
1X-1885, carduoides 186, sphaerocephalus
1X-1885, poeppigis 202, sphaerocephalus
IX-1889 poeppigii 285, sphaerocephalus
Chile, carduoides 348, sphaerocephalus
PERELIPPL E. RIVERA

XIL-1853, poeppigii subsp. multifidus 1117.c, poeppigii subsp. multifidus
1X-1885, poeppigii subsp. multifidus

X-1878, poeppigii SANROMAN

X-1883, poeppigii Chile, carduoides

11-1885, sphaerocephalus Chile, poeppigii subsp. multifidus
REICHE SELER

1897, poeppigii 238, sphaerocephalus

Moo od

SPARRE
11000, poeppigi

TORRES
58, fuscus

VARGAS

8591, annuus

13067, sphaerocephalus
019362, sphaerocephalus

VELARDE

1710, sphaerocephalus
WEBERBAUER
7336, sphaerocephalus
5795, sphaerocephalus

WERDERMANN
758, annuus

380, fuscus

1817, poeppigi:
1820, poeppigú subsp. rs rifie
1414, sphaerocephalus

WEST
3876, fuscus
3954, poeppigú

WORTH-MORRISON
15758, annuus

16209, carduoides
16152, fuscus

15790, poeppigi
16619, poeppigi
16170, poeppigi

ZELLNER
4047, carduoides
4048, sphaerocephalus

89

INDICE DE GENEROS Y ESPECIES *

Bridgesia Hook. 6, 8.
echinopsoides Hook. 6, 23.
Cephaloseris Poepp. ex Reichenbach 5, 8.
poeppigii Kunze ex Less. 16.
Diaphoranthus Meyen 6, 6.
fuscus Meyen 6, 7, 21.
Dumerilia Lag. 5.
Echinops 5.
Leuceria 12.
Moscharia 12.
Oxyphyllum 12.
Polyachyrus Lag. 4, 5, 8, 12.
annuus Johnston 8, 10, 11, 13.
autitus DD. Don 6.77 17/5418;
bridgesii P. et E. 6, 23.
calderensis Phil. 7, 17.
carduoides Phil. 7, 10, 11, 74.
cinereus Ricardi et Weldt 10, 11, 26.
decurrens Lag. ex DC. 6, 7, 17.
echinopsoides (Hook.) DC. 6, 23.
foliosus Phil. 7, 14, 15.
fuscus (Meyen) Walp. 6, 7, 10, 11, 27, le
fuscus var. roseus (Phil.) Reiche 8, 21.
gayi Remy 7, 10, 11, 16.
glabratus Phil. 7, 14, 15.
glandulosus Nutt. 7, 23.
latifolius Phil. 7, 14, 15.

* Los taxa válidos en cursiva.

litoralis Phil. 7, 17.

macrotis Phil. 7, 17.

mollendoensis Johnston 8, 13.

multifidus D. Don 6, 7, 19,

nesites Johnston 8, 217, 22,

nivalis Phil. 7, 27.

niveus Lag. ex DC. 6, 7, 20, 23, 24.

oblongiflorus Koster 8, 19, 20.

poeppigii (Kunze ex Less.) Less. 5, 6, 7, 9, 10, 11, 16, 17, 18, 27.
subsp. multifidus (D, Don) Ricardi et Weldt 10, 11, 19
subsp. poeppigi 10, 16.
var. litoralis (Phil.) Reiche 8, 17.

rigidus Johnston 8, 14, 15.

roseus Phil. 7, 21.

sanromani Phil. 7, 19, 20.

selinoides Reiche 8, 19, 20.

sphaerocephalus D. Don 5, 6, 7, 10, 11, 23.

tarapacanus Phil. 7, 23.

tenuifolius Phil. 7, 17.

uniflorus Sch. Bip. 7, 23.

villosus Weddell 7, 23.

virgatus Johnston 8, 17.

Polyachyrus 6, 8.
Polyachurus 5, 6.

Es

Fig. 1.— Polyachyrus annuus Johnst.: 1, planta (x 0.7); 2, hoja (x 1).
Ricardi 2559.

Fig. 2.— Polyachyrus carduoides Phil.: 1, rama y hoja (x 0.7). Ricardi,
Marticorena y Matthei 1482,

Fig. 3.— Polyachyrus gayi Remy: 1, rama (x 0.7); 2, hoja (x 1.8). Bridges
1418.

Fig. 4.— Polyachyrus poeppigú (Kunze ex Less.) Less., rama y hojas (x 0.7).

Ricardi, Marticorena y Matthei 1467.

y

R E
DS
APN

Fig. 5.— Polyachyrus fuscus (Meyen) Walp.: 1 y 2, planta y hoja (x 0.5).
F. Behn (CONC 8599); 3, hojas: izquierda (x 1). Jiles 3748-1;
centro y derecha (x 1). Ricardi 2567.

l rama (x 0.4); 2 y 3, hoja
(x 0.7); 4, flor externa (x 8); 5, bráctea de la flor externa (x 8).

Fig. 6.— Polyachyrus sphaerocephalus D. Don:
Ricardi, Weldt y Quezada 186.

Fig. 7.— Polyachyrus cinereus Ricardi et Weldt: 1, planta (x 0.6); 2, hoja
(x 1.6). Johnston 5726, typus.

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA 6UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, El
11 DE OCTUBRE DE 1974.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones originales del personal científico del Instituto de

4 Biología de la Universidad de Concepción.

Ñ Esta publicación consta de una Serie Botánica, una
4 Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que
los números se publican tan pronto como la Comisión
Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

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SINOPSIS DEL GENERO ERODIUM EN CHILE
(GERANIACEAE)

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conocerse sino luego que los sabios del pais hagan un

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SINOPSIS DEL GENERO ERODIUM EN CHILE
(GERANIACEAE)

Por

M. RICARDI y E. UGARTE *

RESUMEN

Se hace un primer intento para caracterizar mejor a las especies de
Erodium introducidas en Chile mediante la morfología externa comparada
de hojas y frutos, concluyéndose que el género está representado en el país
por: E. botrys (Cav.) Bertol, E. malacoides (L.) L'Hér. var. malacoides y var.
ribifolium (Jacq.) DC., E. moschatum (L.) L'Hér. y E. cicutarium (L.) L'Hér.
Se adjuntan breves diagnosis, clave, ilustraciones y comentarios generales.

ABSTRACT

A preliminary study for a better identification of the adventitious species
of Erodium present in Chile, using external comparative morphology of leaves
and fruits is done. The following taxa: E. botrys (Cav.) Bertol, E. malacoides
(L.) L'Hér. var. malacoides and var. ribifolium (Jacq.) DC., E. moschatum (L.)
L'Hér. and E. cicutarium (L.) L'Hér. were detected. Short diagnosis, key, il-
lustrations and commentaries are also given.

INTRODUCCION

Se ha podido comprobar que el género Erodium está repre-
sentado en Chile por cuatro especies y una variedad, todas ellas
introducidas del viejo mundo.

. Departamento de Botánica, Universidad de Concepción, Chile,

o bi

Aunque se trata de pocas especies su correcta determinación
no es siempre fácil y ofrece dificultades insospechadas debido al
alto grado de polimorfismo de los órganos vegetativos, especial-
mente en lo que a división del limbo se refiere. También el hábito
caulescente o acaule con una serie de formas de transición difi-
culta, la más de las veces, la seguridad de una correcta deter-
minación; así, es frecuente que en los Herbarios estén los ejemplares
bajo nombres científicos que no corresponden al verdadero. Este
erro se debe, en buena medida, a que las claves usadas y las
diagnosis mismas hacen hincapié en diferencias observadas en la
morfología de la hoja, carácter en este caso extraordinariamente
variable, y no se haya tomado más en cuenta la estructura de los
frutos que ofrecen caracteres más firmes, constantes y seguros.

Es indudable que el género Erodium constituye un complejo
difícil de estudiar críticamente; pero cuya revisión integral es ne-
cesaria y, a no dudar, ella reduciría apreciablemente el número
de especies señaladas por Knuth (1912), por los autores de Flora
Europaea (1968) y por muchos otros que han incluido especies del
género en floras locales o regionales (Barneoud, 1845; Dawson,
1965; Gams, 1924; Macbride, 1949; Munz and Keck, 1959; Reiche,
1896; Stewart and Conring, 1970).

De acuerdo al numeroso material revisado en Herbarios de
Chile (CONC, SGO), Norteamérica (F, GH, UC, US) y Europa (B,
FI HBG, M, MA) más las colecciones del Herbario De Candolle,
en microfichas, ordenado conforme al tomo primero del Prodromus
(1824), se ha podido comprobar que, como ya lo señalara Knuth
(1912) el género tiene su centro de área en la región mediterránea
y de ahí irradia al centro de Europa, Africa y Asia.

Aunque por ahora no sea posible afirmarlo con pruebas con-
cluyentes, parece ser que en América nunca hubo especies en-
démicas y que las pocas descriptas sólo son formas de ciertas
especies altamente adaptables introducidas del viejo mundo ya en
los albores de la colonización europea. Así, por ejemplo, Erodium
cicutarium del mediterráneo a medida que se ha ido introducien-
do hacia el norte de Europa ha dado lugar a un complejo genético
de muy difícil interpretación, ocurriendo al parecer lo mismo en
América.

La especial conformación de los diásporos ha favorecido la
difusión, en especial la de aquellas especies que constituyen ma-
lezas de cultivos o que tienen cierto valor como forrajeras secun-
darias.

Erodium L'Hér.
L'Héritier, Geraniología, 1787-1788 (1792).

Flores ligeramente irregulares. Sépalos 5, imbricados, caducos,
los 2 superiores un tanto diferentes a los inferiores, rosado-liliáceos.
Nectarios 5, alternando con los pétalos. Estambres 10, los 5 exterio-
res sin anteras, los 5 interiores fértiles. Ovario 5-lobado, 5-locular,
rostrado; óvulos 2 por lóculo, sólo uno fértil; estilos soldados al
rostro; estigmas 5, filiformes. Fruto compuesto de 5 esquizocarpos
monospermos libres por espiralamiento de los rostros; rostros pro-
vistos de cerdas largas; esquizocarpos con 2 fóveas apicales 1-2-
surcadas o sin surco. Semillas exalbuminadas. (Fig. 1).

Hierbas, excepcionalmente sufrútices, anuales, bienales o pe-
rennes, caulescentes o acaules, con hojas estipuladas, alternas u
opuestas, pinatifidas, pinadas o lobadas, muy raramente enteras.
Flores dispuestas en cimas umbeliformes.

Alrededor de 50-60 especies del viejo mundo, la gran mayoría
mediterráneas, muchas de ellas naturalizadas y de amplia difu-
sión en ambos hemisferios.

Por sus frutos tan característicos se les denomina casi univer-
salmente como "alfilerillo” o "relojito”.

CLAVE

A. Rostro de 7-11 cm de largo. Fóveas apicales de los esqui-
zocarpos con dos surcos. Hojas basales pinatisectas, pina-
tilobadas o lobado-crenadas; las superiores siempre pina-
CR IA A y A 1. E. botrys

AA. Rostro de 2,5-4 cm de largo. Fóveas apicales de los esqui-
zocarpos con un surco.

B. Hojas con limbo sublobado- crenado o profundamente
lobado.

C. Láminas con margen muy entero, sublobado-
crenado. Mii OS 2. E. malacoides

CC. Láminas más o menos profundamente 3-5-pinati-
lobadas cocos 2a. E. malacoides var. ribifolium

BB. Hojas pinaticompuestas.
D. Foliolos pinatifidos. Fóveas con glándulas ................
O EA TO O 3. E. moschatum

DD. Foliolos pinatisectos. Fóveas sin glándulas ...............
AL ID A 4. E. cicutarium

Fig. 1.—Esquizocarpos. A: Erodium botrys (Cav.) Bertol. (x 11,5), B:
Erodium malacoides (L.) L'Hér. var. ribifolium (Jacq.) DC.
(x 20), C: Erodium cicutarium (L.) L'Hér. (x 22), D: Erodium
moschatum (L.) L'Hér. (x 12).

ura

1. Erodium botrys (Cav.) Bertol.

Bertolini, Amoen. Ital. 35, 1819. Geranium botrys Cavanilles, Mon.
Cl. Dissert, 4: 218, tab. 99, fig. 2, 1787.

Hierbas anuales o bienales, caulescentes o acaules, esparcida-
mente híspido-pubescentes; tallos ascendentes de 5-40 cm de largo.
Hojas basales de 1,5-12 cm de largo; lámina de 1,5-5,5 cm de largo;
pecíolos de 1-7,5 cm de largo; hojas caulinares gradualmente sé-
siles. Umbelas 2-4 floras, pedicelos de largo variable, generalmente
reflexos en la madurez del fruto. Esquizocarpos con fóveas profun-
das notablemente bisurcadas. 2 n = 40. (Fig. 2, A-O).

En las formas anuales muchos individuos presentan una no-
table reducción del tamaño de todos sus órganos, quedando la
inflorescencia reducida a una sola flor; pero los esquizocarpos y
rostros alcanzan la magnitud de las formas bienales altamente de-
sarrolladas y ramificadas.

Especie mediterránea, ruderal o de terrenos áridos, adventicia
y cosmopolita. En Chile se ha recolectado desde la provincia de
Coquimbo hasta la de' Malleco.

Probablemente E. obtusiplicatum (Maire, Weiller et Wilczek)
Howell, del norte de Africa y naturalizado en Norteamérica, es sólo
un sinónimo de E. botrys (Cav.) Bertol.

La forma montanum de Brumhard (1906) de Chile y California,
fué fundada por sobre la base de ejemplares anuales poco desa-
rrollados de E. botrys provenientes de la provincia de Santiago.

Material usado para ilustraciones.

Fig. 1, A.— Prov. Coquimbo. Dpto. Ovalle: El Tranque, norte de
Socos, Leg. Jiles 3913, 15-X-1961. (CONC).

Fig. 2, A-B-C-D-E.— Prov. Concepción. Dpto. Coronel: Km 15 camino
Coronel, Leg. Parra-Rodríguez 10, 11-X-1967 (CONC).

Fig. 2, F-G-H-1.— Prov. Aconcagua. Dpto. Petorca: Carretera Pana-
mericana, 3 Km antes puente Guaquén, Leg. ria q

Weldt 1299, 15-X-1971 (CONC).

Fig. 2, J-K-L-M-N-O.— Prov. Coquimbo. Dpto. Illapel: Los Vilos, Leg.
Jiles 2411, 12-X-1963 (CONC).

Fig. 2.— Siluetas de hojas (x 0,9). A-O: Erodium botrys (Cav.) Bertol.,
hojas basales y superiores.

pan e

2. Erodium malacoides (L.) L'Hér. var. malacoides

L'Héritier, in Aiton, Hort. Kew. 2: 415, 1789. Geranium malacoides
Linnaeus, Spec. Pl. 2: 680, 1753.

Hierbas anuales o bienales, caulescentes, híspido-pubescentes,
glandulosas en los órganos juveniles y sépalos; tallos ascendentes
de 50-60 cm de largo. Hojas de 2-16 cm de largo; lámina de 1-5,5 cm
de largo; pecíolos de 1-12 cm de largo. Umbelas axilares 2-8-floras.
Esquizocarpos con fóveas conspicuas y un surco profundo y ancho
en la base. 2 n = 40. (Fig. 3, A-B-C).

Especie mediterránea ampliamente difundida en regiones tem-
pladas y subtropicales del mundo. En Chile es adventicia en terre-
nos de cultivo, hasta ahora sólo recolectada en la provincia de
Santiago.

Material usado para ilustraciones.

Fig. 3, A.— Prov. Santiago. Dpto. Santiago: Apoquindo, leg. Budnik,
13-1X-1947 (CONC).

Fig. 3, B-C.— Uruguay. Dpto. Montevideo: Cerrito, leg. Herter 158,
VI-1925 (CONC).

2a. Erodium malacoides (L) H'Hér. var. ribifolium
(Jaca.) DC.

De Candolle, Prodromus, 1: 648, 1824. Erodium ribifolium Jacquin,
Icon. Plant. Rar. 3:8, tab. 509, 1794.

Hierbas anuales o bienales, caulescentes o acaules, tallos as-
cendentes de 5-30 cm de largo. 2 n = 40. (Fig. 3, D-L).

En las formas anuales acaules, las hojas están arrosetadas y
con el limbo más entero que en los individuos bienales más ro-
bustos.

Variedad mediterránea y de España distinta de la típica por
la particular escisión del limbo, hasta el presente no considerada
como adventicia en América. En Chile se ha recolectado en terre-
nos modificados y ruderales desde la provincia de Antofagasta
hasta la de Valparaíso.

Los ejemplares estudiados concuerdan plenamente con el ma-
terial clásico del Herbario De Candolle. Probablemente la no con-
sideración de esta variedad indujo a describir E. geoides St. Hil
(Brasil), E. macrophyllum Hook. et Arn. (Norteamérica) y para
Chile E. chilense Johnston (1938). De esta última entidad, si bien
no se ha estudiado el tipo, la diagnosis y las localidades de los
paratipos coinciden plenamente con los ejemplares de la var.
ribifolium del Herbario CONC, lo que incuestionablemente per-
mite asegurar que la especie de Johnston es un sinónimo de aquella.

dis

Fig. 3.— Siluetas de hojas (x 0,9). A, B, C: Erodium malacoides (L.)
L'Hér. var. malacoides, hojas basales. D, E, F, G, H, 1 J, K, L:
var. ribifolium (Jacq.) DC., hojas basales y superiores.

0

Material usado para ilustraciones.

Fig. 1, B.— Prov. Aconcagua. Dpto. Petorca: Carretera Panameri-
cana, 4 Km antes puente Guaquén, leg. Marticorena-Rodríguez-

Weldt 1285, 15-X-1971 (CONC).

Fig. 3, D-E.— Prov. Valparaíso. Dpto. Valparaíso: Quilpué, leg. L.
Muñoz A., 1X-1947 (CONC).

Fig. 3, F-G.— Prov. Coquimbo. Dpto. La Serena: Quebrada Honda,
leg. Jiles 3998, :17-XI-1961 (CONC).

Fig. 3, H-1J-K-L.— Marticorena-Rodríguez-Weldt 1285.

3. Erodium moschatum (L.) L'Hér.

L'Héritier, in Aiton, Hort. Kew. 2: 415, 1789. Geranium moschatum
Linnaeus, Spec. Pl. 2: 680, 1753.

Hierbas anuales o bienales con hojas carnosas, caulescentes
o subacaules, hispido-alandulosas; tallos de 10-60 cm de largo, pro-
cumbentes o ascendentes. Hojas de 2-21 cm de largo; raquis de
1,5-10 cm de largo; pecíolos de 0,5-12 cm de largo. Umbelas axi-
lares, 4-12-floras. Esquizocarpos con fóveas conspicuas, glandulosas,
con surco ancho y profundo en la base. 2 n = 40. (Fig. 4, A-D).

En las poblaciones locales alternan individuos caulescentes
con formas acaules arrosetadas. :

Especie mediterránea y del norte y centro de Europa de amplia
difusión en el resto del mundo, tanto en terrenos de cultivo como
en empastadas artificiales. En Chile se ha recolectado desde la
provincia de Coquimbo hasta la de Malleco.

Material usado para ilustraciones.

Fig. 1, D.— Prov. Chillán. Dpto. Chillán: Escuela de Agronomía, leg.
Matthei, 3-X-1959 (CONC).

Fig. 4, A-B.— Prov. Aconcagua. Dpto. San Felipe: Cerro de Lo
Vargas, leg. Torres, 17-1X-1953 (CONC).

Fig. 4, C.— Prov. Valparaíso. Dpto. Valparaíso: Limache, leg. K.
Behn, 9-VIIt-1916 (CONC).

Fig. 4, D.— Prov. Malleco, Dpto. Angol: Mininco, leg. Schwabe,
27-X-1951 (CONC).

— 11 —

Fig. 4— Siluetas de hojas (x 0,9). A-D: Erodium moschatum (L.) L'Hér,,
hojas basales.

AS

4. Erodium cicutarium (L.) L'Hér.

L'Héritier, in Aiton, Hort. Kew. 2: 414, 1789. Geranium cicutarium
Linnaeus, Spec. Pl. 2:680, 1753.

Hierbas anuales o bienales (perennes), caulescentes o acaules,
híspido-pubescentes, glandulosas en los órganos juveniles y sépa-
los; tallos ascendentes o procumbentes de 8-90 cm de largo. Hojas
basales pecioladas, las caulinares paulatinamente sésiles, de 2-15
cm de largo; raquis de 2-9 cm de largo; pecíolos de 0,5-4,5 cm de
largo. Umbelas axilares 4-12-floras. Esquizocarpos con fóveas bien
manifiestas, eglandulosas, con surcos basales profundos o apenas
visibles. (Fig. 5, A-)).

Especie mediterránea difundida ampliamente por el mundo
como maleza de terrenos de cultivo o modificados. En Chile se ha
recolectado a lo largo de todo el país.

Erodium cicutarium es una entidad extraordinariamente poli-
morfa con formas anuales, bienales y aún perennes, de hábito
caulescente erguido, tendido o acaule con hojas arrosetadas. En
algunos casos la reducción de los órganos vegetativos puede llegar
hasta el nanismo, lo que es posible observar en poblaciones lo-
cales de regiones áridas del norte de Chile y frías de Magallanes,
en las que también la inflorescencia queda reducida a una flor.
Respecto a la escisión del limbo de los folíolos se puede observar
también que hay formas de transición que van de pinatifidas hasta
pinatisectas; sin embargo para todos los individuos estudiados la
magnitud de los sépalos, largo de los rostros y mericarpos, permitió
constatar que existía notable constancia.

La enorme variabilidad del complejo Erodium cicutarium ha
hecho prácticamente infructuosos los esfuerzos por lograr un orde-
namiento taxonómico coherente, que permita con cierta seguridad
reconocer subespecies o variedades y asignarles los sinónimos co-
rrespondientes. De acuerdo a Bolkhouskikh y colaboradores (1969)
Zn = 20, 36, 48, 54, 56, 60.

Los estudios citológicos de numerosos autores, especialmente
europeos han servido, más que para aclarar el complejo, para
demostrar la existencia de un problema que aún dista mucho de
ser dilucidado por la vía de la taxonomía experimental. Sirva para
ello de ejemplo la monografía de Larsen (1958) en que trata de
aclarar las especies de Erodium y subespecies de E. cicutarium
de Dinamarca y otros países incluyendo a Chile (E. cicutarium
subsp. arvale), y los comentarios que hacen los autores en Flora
Europaea (1l.c. 202-3).

Fig. 5.— Siluetas de hojas (x 0,9). A-J: Erodium cicutarium (L.) L'Hér.,

hojas basales y superiores.

PA 1

Por todo lo expuesto lo más aconsejable por ahora es mantener,
sensu lato, la entidad E. cicutarium (L.) L'Hér.

Material usado para ilustraciones.

Fig. 1, C.— Prov. Antofagasta. Dpto. Taltal: Paposo, Guebrada La
Higuera, leg. Ricardi 2665, 26-1X-1953 (CONC).

Fig. 5, A-B.— Prov. Malleco, Dpto. Angol: Mininco, leg. Schwabe,
12-1X-1952 (CONC).

Fig. 5, C-D-E.— Prov. Coquimbo. Dpto. Elqui: Paihuano, leg. Pfister,
20-1X-1948 (CONC).

Fig. 5, F.— Ricardi 2665.

Fig. 5, G-H.— Prov. Colchagua. Dpto. San Fernando: La Rufina, leg.
Ricardi, 3-1-1951 (CONC).

Fig. 5, L— Prov. Tarapacá. Dpto. Arica: Camino Zapahuira-Putre,
3.300 m.s.n.m., leg. Ricardi-Weldt-Quezada 177, 5-V-1972 (CONC).

Fig. 5, J.— Prov. Coquimbo. Dpto. La Serena: Arqueros, leg. Marti-
corena-Matthei 316, 16-X-1963 (CONC).

BIBLIOGRAFIA

BARNEOUD, M.
1845 Geraniaceas en C. Gay, Historia Física y Política de Chile,
Botánica. 1: 387-391. Fain et Thunot, Paris.

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Sciences of the USSR,

BRUMHARD, P.
1906 Erodii generis novae varietates atque formas. Repert. Spec. Nov.
Regni Veg. 2:116-119.

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1965 en A. L. CABRERA. Flora de la Provincia de Buenos Aires, 4 : 20-23.
INTA, Argentina.

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1824 Prodromus Systematis Naturalis Regni Vegetabilis, 1: 644-649.
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1924 Geraniaceae, en G. HEGI, Illustrierte Flora von Mitteleuropa,
4(3) : 1716-1725. J. F. Lehmann Verlag. Minchen.

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JOHNSTON, IL M.
1938 New or noteworthy plants from temperate South-America. ].
Arnold Arbor. 19: 252,

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Conspectus, 53: 221-240. Verlag van Wilhem Engelmann, Leipzig
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LARSEN, K.
1958 Cytological and experimental studies on the genus Erodium
with special reference to the collective species E. cicutarium
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1-25.
MACBRIDE, J.
1949 Flora of Peru, Geraniaceae. Field Mus. Nat. Hist. Bot. Ser. 13(3):
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MUNZ, P. and D. KECK
1959 A California Flora, 143-145. Univ. California Press, U.S.A.

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1896 Estudios críticos sobre la Flora de Chile. Anales Univ. Chile
93: 579-580; Flora de Chile 1: 287-288.

STEWART, D. and M. CONRING
1970 Manual of the Vascular Plants of Texas, 892-893. George Banta
Co, Wisconsin, U.S.A.

WEBB, D. A. and CHARTER

1968 en T. G. TUTIN et al. Flora Europaea 2: 1999-1204. Cambridge
University Press, Inglaterra.

o

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, EL
28 DE MAYO DE 1974.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una
Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que
los números se publican tan pronto como la Comisión
Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

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GAYANA

ENSTITUTO DE BIOLOGIA

BOTANICA 1971 N? 28

DIATOMEAS DE AGUA DULCE DE CONCEPCION
Y ALREDEDORES (CHILE)

Por

PATRICIO RIVERA R.

Departamento de Botánica
Instituto de Biología
Universidad de Concepción, Chile

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE
DIRECTOR : Mario Alarcón A.
EDITORES
Mario Alarcón A. Lajos Biro B.
Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

GAYANA

SES 11 TUTOMABE BIOLOGIA

BOTANICA LTL N* 28

DIATOMEAS DE AGUA DULCE DE CONCEPCION
Y ALREDEDORES (CHILE)

Por

PATRICIO RIVERA R.

Departamento de Botánica
Instituto de Biología
Universidad de Concepción, Chile

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente
conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

DIATOMEAS DE AGUA DULCE DE CONCEPCION
Y ALREDEDORES (CHILE)

Por
PATRICIO RIVERA R.

Departamento de Botánica
Instituto de Biología
Universidad de Concepción, Chile

RESUMEN

Se estudió la flora diatomológica de los principales cuerpos de agua
dulce existentes en Concepción y alrededores.

Se determinó un total de 129 taxa, 12 de los cuales son nuevos para la
Ciencia y 33 son señalados por primera vez para Chile.

Los géneros que caracterizan esta flora son Pinnularia, Navicula, Cymbella,
Gomphonema, Surirella y Synedra.

Se entrega un amálisis taxonómico detallado de cada uno de los taxa
incluyendo dibujos, distribución en Chile y datos ecológicos.

ABSTRACT

The freshwater diatom flora from Concepción and vicinity was studied.

One hundred and twenty nine diatoms taxa were determined, 12 are new
taxa and 33 are new records for Chile.

The most common genera for this area were Pinnularia, Navicula, Cym-
bella, Gomphonema, Surirella and Synedra.

INTRODUCCION

El estudio de las diatomeas de agua dulce de esta gran zona
industrial es un tema nuevo. Los ríos, lagunas y arroyos que la
recorren y hermosean no habían sido estudiados, especialmente
en lo que se refiere a su contenido algológico, donde las diatomeas
desempeñan un primerísimo papel.

0

Durante los últimos años, y desde la Universidad de Concep-
ción, han surgido varias publicaciones que se refieren a diatomeas
chilenas, pero principalmente de ambiente marino (Rivera 1969,
1973, 1974a, 1974b; Rivera, Parra y González, 1973).

Es así como la información existente sobre las diatomeas de
agua dulce de Concepción y alrededores estaba basada exclusi-
vamente en las referencias que Thomasson (1963) y Rivera (1970)
hacen de la Laguna Chica de San Pedro. El primer autor señala
dos especies para ese lugar y el segundo aumenta la lista a 27 taxa.

Ante esta falta de información se vio la importancia y nece-
sidad de realizar un estudio más completo de esta zona. Este es-
tudio se hizo realidad gracias al Consejo de Investigación Cientí-
fica de la Universidad de Concepción (CIC), que con el número
20805 patrocinó la investigación, Para ellos, y en general para la
Universidad de Concepción, mis más sinceros agradecimientos.

Deseo dejar constancia de mi gratitud con la Academia de
Ciencias Naturales de Filadelfia, Estados Unidos, que al otorgarme
el McHenry Fund Grant me permitió permanecer dos meses en
ese país trabajando sobre diatomeas chilenas con los Doctores
Ruth Patrick, Jefe del Departamento de Limnología, y Charles Reimer,
curador del Herbario Diatomológico del mismo departamento. El
gran interés que pusieron en enseñarme las técnicas y la taxono-
mía de las diatomeas hace que sienta para con ellos un profundo
reconocimiento. De la misma forma para el Dr. Heinz Kerner y en
general a todo el personal auxiliar y técnico de dicho departa-
mento que me brindó su amistad y ayuda, vaya mi eterna gratitud.

AREA DE ESTUDIO, MATERIALES Y METODOS

Para el estudio de las diatomeas de agua dulce de Concep-
ción y alrededores se consideraron seis lugares de recolección de
muestras (Fig. 1), los cuales a juicio del autor, son los de mayor
importancia para esta área. Ellos son los siguientes:

1.— Río Andalién. Este río se forma en la localidad de La Flo-
rida y corriendo con un curso tortuoso desemboca finalmente en
la parte sur de la Bahía de Concepción. Las muestras se recolec-
taron en el llamado "Puente 3” del camino que une Concepción
con Bulnes (36%49'5,72253"W), aproximadamente a 20 kilómetros de
Concepción. El caudal de este río es pequeño y por ello es un
lugar preferido por los veraneantes durante los meses de enero y
febrero, pero, durante el invierno, aumenta considerablemente pro-
duciendo grandes inundaciones en los terrenos adyacentes. La tem-
peratura superficial de agua varió desde 10,5 a 12?C durante el in-

7

vierno, alcanzando valores de 15,5 a 25*C durante los meses de
verano (Fig. 2).

2.— Río Bío-Bío. Este río, que nace en la Laguna de Galletué
a 1.160 metros de altura, tiene en la parte donde se recolectaron
las muestras unos 1.000 metros de ancho y una velocidad de co-
rriente de 4-5 kilómetros por hora. Desemboca en el mar inmedia-
tamente al sur de la ciudad de Concepción; su boca está obstruída
por bancos de arena que hacen impracticable la entrada de em-
barcaciones. Las muestras fueron recolectadas a la altura de la
localidad de Leonera (36%58'S,73200"W) utilizándose para ello una
red de plancton y mediante el raspado de rocas. La temperatura
superficial del agua de este río osciló entre 9 y 139C durante el
invierno, mientras que en primavera-verano alcanzó valores de 16

a 21% (Fig. 3).

3.— Laguna Pineda. Está situada aproximadamente a 14 kiló-
metros desde Concepción, por el camino entre esta ciudad y Bul-
nes (36%49'5,72259"W). Rodeada de bajos cerros cubiertos de pinos
ocupa una extensión de unos 200 metros de largo por 150 metros
de ancho; su fondo es cenegoso y desde sus orillas y hacia el in-
terior se encuentra gran cantidad de los llamados "camalotes” o
"lirios de Agua” (Eirchornia crassipes). Las muestras se recolecta-
ron con red de plancton y mediante raspado de plantas sumergidas.
La temperatura más baja del agua de esta laguna se encontró
durante el mes de agosto (10*C) llegando a 14*C a fines del in-
vierno. En primavera y verano osciló entre 16 y 21*C (Fig. 4).

4.— Arroyo Leonera. Este angosto arroyo de rápido caudal es-
tá situado en la localidad de Leonera, hacia el costado este del
río Bío-Bío, entre las localidades de Hualqui y Chiguayante (36*56'S,
73200"W). Se recolectaron muestras mediante red de plancton y
por raspado de plantas superiores sumergidas. La temperatura del
agua durante el invierno osciló entre 9 y 10%C, alcanzando en
primavera-verano valores entre 13 y 20*C (Fig. 5).

5.—Laguna La Posada. Esta pequeña pero hermosa laguna
está situada a unos 17 kilómetros al sur de Concepción, por el ca-
mino que la une con Coronel (36*56'5,73:10"W). Al igual que en
los otros lugares muestreados las muestras se recolectaron con red
y mediante raspado de plantas superiores sumergidas. La tempe-
ratura superficial del agua varió, durante el invierno, entre 11 y
12:C. En verano la temperatura máxima llegó a 23,5*C (Fig. 6).

6.— Laguna Lo Méndez. Está situada en el límite norte de la
ciudad de Concepción, en el inicio de la autopista que une Con-
cepción con Talcahuano (36250'5,73202'"W). De forma circular, tiene

al pax

un diámetro aproximado de 80 metros; sus aguas están usualmente
saturadas de materia orgánica debido a los desagiies de las casas
adyacentes a este lugar. Varias veces vimos animales en avanza-
do estado de putrefacción flotando en dicha laguna. La tempera-
tura del agua durante otoño e invierno osciló entre 12 y 13*C; en
primavera y verano alcanzó valores entre 17 y 23,5%C (Fig. 7).

15 LES 152

de TOME

BAHIA
CONCEPCIU

2 ANOALE >
z _e
PUENTE N93
3 LAG.
PINEDA

o
o

LAG. ¿

A

OD A. LEONERA

pd, e

ESCALA 1:250.000

Figura 1—.Lugares estudiados en Concepción y alrededores.

EE

En cada uno de estos seis lugares muestreados se recolectó
una muestra mensual, desde enero a diciembre de 1971, con el ob-
jeto de tener una idea general de la variación estacional de las
especies.

Las muestras fueron conservadas en formalina neutralizada, y
para la eliminación de la materia orgánica de los frústulos, se si-
guió el clásico método de oxidación de Múlle--Melchers 4 Ferrando
(1956). El material limpio fue montado finalmente en Hyrax. La
línea al lado de cada figura indica 10 u.

RESULTADOS

Un total de 129 taxa de diatomeas fueron determinados en el
área estudiada, doce de los cuales son nuevos para la Ciencia:

Amphora splendida sp. nova

Cyclotella stelligera (CleveSsGrun.)V.H. var major var. nova

Cymbella hauckú V.H. var. chilensis var. nova

Cymbella tumida var. australica (Schm.)Hust. f.
rostrata f. nova

Frustulia patrick sp. nova
Gyrosigma eximioides sp. nova
Hantzschia amphioxys (Ehr.)Grun. var. chilensis var. nova

Pinnularia brevicostata Cl. var. intermedia Manguin
f. cuneata í. nova

Pinnularia pinedana sp. nova

Pinnularia pinedana var. attenuata var. nova
Pinnularia tropica Hust. var. densestriata var. nova
Stauroneis turfosa Tarn. á Jit. var. reímert var. nova

La lista completa de los taxa de diatomeas con los lugares
donde fueron encontrados es la siguiente:

EAN ER

15007. Mp,

* indica primera citación para Chile

Achnanthes
brevipes var. brevipes
hungarica var. hungarica
lanceolata var. dubra
pinnata var. pinnata
Amphipleura
lindheimerti var. neotropica*
Amphora
splendida
Asterionella
formosa var. gracillima
Ceratoneis
arCuUs Var. Arcus
Cocconeis
placentula var. euglypta
Cyclotella

meneghiniana var. meneghiniana

stelligera var. major
Cymatopleura
solea var. solea
Cymbella
affinis var. affinis
cymbiformis var. cymbiformis
gracilis var. gracilis
hauckú var. chilensis

naviculiformis var. naviculiformis

postrata var. postrata
sinuata var. sinuata
tumida í. major*
tumida var. tumida

tumida var. australica f. rostrata

ventricosa var. ventricosa
Diatoma

tenue var. tenue

hiemale var. quadratum
Diploneis

subovalis var. subovalis
Epithemia

sorex var. sorex

zebra var. zebra

[o]
O o 3
da
O
5 A
+
+
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“+ + + +
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+o+ +
+ +
+
+ +
+
e
++ +3++
+ + +

L. Lo Méndez

++

TAXA

* indica primera citación para Chile

Eunotia
fallax var. gracillima f. densistriata
flexuosa var. linearis
major var. asiatica
pectinalis var. minor
pectinalis var. undulata
sudetica var. sudetica
Fragilaria
construens var. exigua
construens var. venter
pinnata var. pinnata
vaucheriae var. vaucheriae
Frustulia
patrick
rhomboides var. amphipleuroides*
vulgaris var. vulgaris
Gomphonema
acuminatum var. acuminatum
constrictum var. constrictum
gracile var. gracile
hebridense*
herculeanum var. herculeanum
martini var. martini*
montanum var. montanum
montanum var. subclavatum
parvulum var. parvulum
parvulum var. micropus
turris
Gyrosigma
eximioides
obscurum var. obscurum*
spenceri var. spenceri
Hantzschia
amphioxys var. chilensis
elongata var. elongata
Melosira
granulata var. granulata
varians
Meridion
circulare var. constricta

E ve $
34 20 7 UD E
e TE
a dd = dd il
E A
GS 6 4 «4 +3 5
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an LS LE
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sl =+
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AG
IS ==
+
ar +
sl
E +
+
—
SHNEFLOS ER.
Se Ar E
de

EAXA

* indica primera citación para Chile

Río Andalién

Río Bío-Bío

L. Pineda

A. Leonera

L. La Posada

L. Lo Méndez

Navicula
anglica var. subsalsa*
capitata var. hungarica*
cuspidata var. cuspidata
cuspidata var. heribaudi*
decussis
effrenata*
lapidosa
lateropunctata*
mutica var. tropica*
mutica var. undulata
pupula var. rectangularis
radiosa var. radiosa
rhynchocephala var. rhynchocephala
salinarum var. intermedia*
simula*
viridula var. avenacea
viridula var. rostellata*
Neidium
bisulcatum var. baicalense*
magellanicum var. magellanicum
iridis var. iridis
iridis var. ampliatum*
Nitzschia
acicularioides*
amphibia var. umbrosa*
dissipata var. dissipata
kutzingiana var. kutzingiana*
linearis var. linearis
thermalis var. minor*
Opephora
martyi
Pinnularia
acrosphaeria var. acrosphaeria
biceps var. biceps*
borealis var. borealis
brebissonúi var. diminuta
brevicostata var. intermedia f. cuneatea
brevicostata var. sumatrana*
dactylus var. dactylus

o

++

44 +H+ ¿++

FRH A E EE A ++ ++

+++ +

++

++

+++

++ ++
+

++ ++

+++

++

|
5

++

++

++

TAXA

* indica primera citación para Chile

major var. linearis
pinedana var. pinedana
pinedana var. attenuata

substomatophora var. substomatophora*

termitina var. termitina*

tropica var. densestriata

viridis var. intermedia

viridis var. viridis
Plagiogramma

interuptum
Rhoicosphenia

curvata var. curvata
Rhopalodíia

gibba var. ventricosa

musculus var. musculus
Stauroneis

anceps var. anceps

anceps f. gracilis

phoenicenteron í. gracilis*

turfosa var. reimeri
Stenopterobia

intermedia var. intermedia*
Surirella

biseriata var. biseriata

guatimalensis

ovalis var. ovalis

ovalis var. pinnata*

ovalis var. salina

ovata var. smithil

pseudolinearis var. pseudolinearis

robusta var. splendida

tenera var. nervosa
Synedra

ACUS VAT. ACUS

parasitica var. subconstricta*

pulchella var. lacerata

radians var. radians

socia var. socia*

ulna var. ulna

ulna var. danica

| Río Andalién

+++

ulna var. oryrhynchus f. mediocontracta

Río Bío-Bío

0

HEHE AH? + ++

++

+++

|
+ + +++++%+ |L. Pineda

++

¡ A. Leonera

pl

+++ ++ ++

+++

+

| L. La Posada

_

+++

++

¡| L. Lo Méndez

|
/

+++

Los siguientes 28 taxa deben agregarse a la lista de las dia-
tomeas de los alrededores de Concepción, pues si bien es cierto
no fueron encontradas en las muestras analizadas han sido ci-
tadas por Rivera (1970) para la Laguna Chica de San Pedro (10
taxa), por Rivera en Rivera, Parra y González (1973) para el Estero
Lenga (17 taxa) y por Rivera (1974a) para la Laguna Verde del
Parque Hualpén (2 taxa):

Laguna Chica

San Pedro
Estero Lenga

Lag. Verde

|
|
|

Achnanthes biasolettiana
PO lanceolata var. lanceolata
És lanceolata var. elliptica
Attheya zachariasi var. zachariasi
4 zachariasi var. curvata
Ceratoneis arcus var. amphyozxis
sl arcus var. linearis
Cocconeis thumensis
Cyclotella stelligera var. stelligera
Cymbella lanceolata var. lanceolata
Fragilaria capucina var. lanceolata +
Frustulia rhomboides var. capitata +
Gomphonema constrictum var. capitatum +
Hantszchia amphioxys Í. capitata
Melosira distans var. distans +
él italica var. italica 5
Nitzschia levidensis +
Pinnularia abaujensis í. linearis
abaujensis var. subundulata
sd divergens var. divergens
ek gibba var. sancta
se latevittata f. medioconstricta
ón major var. transversa
Stauroneis anceps í. linearis
Surtrella ovata var. ovata
Synedra pulchella var. pulchella
4 ulna var. aequalis
ú ulna var. subaequalis

++ +++
++

+ +++
+++ +

++

HE +++

pa 7

De esta forma el total de diatomeas de agua dulce conocidas
hasta el momento para Concepción y sus alrededores alcanza la
cantidad de 158 taxa. De ellos 33 se señalan por primera vez en
Chile (marcados con asterisco en la lista general de taxa).

Estos 158 taxa se reparten en 33 géneros, muchos de los cua-
les están pobremente representados, mientras que otros contienen
un mayor número de taxa. A continuación se da la lista de los gé-
neros encontrados y el número de taxa de cada uno de ellos:

Achnanthes
Attheya
Amphipleura
Amphora
Asterionella
Ceratoneis
Cocconeis
Cyclotella
Cymatopleura
Cymbella
Diatoma
Diploneis
Epithemia
Eunotia
Fragilaria
Frustulia
Gomphonema
Gyrosigma
Hant2schia
Melostira
Meridion
Navicula
Neidium
Nitzschia
Opephora
Pinnularia
Plagiogramma
Rhotcosphenia
Rhopalodía
Stauroneis
Stenopterobia
Surirella
Synedra

h

pun]

m ha
F0F0NrtRe rr 14 Q0Oo0oo RAS qe NON -o0DN-o0NO- - py

HR

De esta lista se ve claramente que el género predominante es
Pinnularia, seguido por Navicula, Cymbella, Gomphonema, Su-
rirella y Synedra. Por lo tanto son estos los géneros que mejor ca-

Je. Fall

racterizan a la flora diatomológica de Concepción y sus alrededores,
especialmente si se considera que muchos de los taxa de estos gé-
neros se presentaron en gran número en las muestras.

Río Andalién

Fueron determinados 66 taxa de diatomeas, tres de los cuales
se presentaron durante todo el año: Cocconeis placentula var.
euglypta, Navicula salinarum var. imtermedia y Synedra ulna
var. ulna.

Los siguientes taxa se presentaron exclusivamente en este río,
siempre en escasa cantidad: Cymbella tumida var. autralica 1.
rostrata, Hantzschia amphioxys var. chilensis, Navicula mutica
var. undulata, Opephora martyi y Plagiogramma interruptum.
Río Bío-Bío

Setenta y un taxa aparecieron en las muestras estudiadas, 6
de ellos estuvieron presentes durante todo el año: Ceratoneis arcus
var. arcus, Cocconeis placentula var. euglypta, Nitzschia dissi-
pata, N. kutzingiana, Rhoicosphenia curvata y Synedra ulna
var. ulna.

Los siguientes 11 taxa aparecieron solamente en las muestras
recolectadas en este río: Cyclotella stelligera var. major, Cym-
bella prostrata, Diatoma tenue var. tenue, D. hiemale var. qua-
dratum, Frustulia rhomboides var. amphipleuroides, Navicula
effrenata, N. mutica var. tropica, N. simula, Surirella ovalis,
S. ovalis var. pinnata y S. ovalis var. salina.

Laguna Pineda

De los 56 taxa presentes en esta laguna, 6 lo hicieron durante
todo el año: Cymbella gracilis, Eunotia flexuosa var. linearis, E.
pectinalis var. minor, Frustulia patrick, Gomphonema gractle
y Stenopterobia intermedia.

Otros Y taxa se presentaron exclusivamente en este lugar:
Gomphonema martini, G. turris, Hantzschia elongata, Navicula
anglica var. subsalsa, Neidium iridis var. ampliatum, Pinnularia
brevicostata var. intermedia f. cuneata, P. brevicostata var. su-
matrana, P. viridis var. intermedia y Synedra ulna var. danica.

Arroyo Leonera

Un total de 53 taxa fueron determinados para este lugar, dos
de ellos presentes durante todo el año: Frustulia vulgaris y Na-
vicula viridula var. avenacea. Otros 8 taxa son exclusivos para
este arroyo: Achnanthes brevipes, Gomphonema montanum, Na-
vicula lapidosa, Neidium magellanicum, Pinnularia tropica var.
densestriata, Stauroneis turfosa var. reimeri y Surirella pseu-
dolinearis.

Laguna La Posada
Cuarenta y seis taxa fueron encontrados en esta laguna y so-
lamente uno, Cymbella cymbiformis, se presentó durante todo el

pp as

año. Otros 9 taxa son, hasta este momento, exclusivos para este lugar:
Asterionella formosa var. gracillima, Cymbella hauckii var. chi-
lensis, Eunotia sudetica, Fragilariía construens var. exigua, IF.
pinnata, Gomphonema hebridense, Gyrosigma obscurum, Navi-
cula cuspidata var. heribaudi y Stauroneis anceps.

Laguna Lo Méndez

Este fue el lugar más pobremente representado en diatomeas:
sólo 27 taxa fueron encontrados y uno sólo, Melosira granulata,
se presentó durante todo el año y siempre en gran cantidad. Un
solo taxon, Epithemia sorex, es exclusivo para este luagr.

ANALISIS DE LOS TAXA
Orden DISCALES

Familia COSCINODISCACEAE
Género MELOSIRA Agardh

Clave para los taxa de Melosira.

1. Frústulos muy hialinos, estrías no visibles ............. (2) M. varians
e Erústulos, com otras características bl a 2
2. Estrías muy notorias, fuertemente punteadas,

ena OA o LE di io AN (1) M. granulata
ABS TÍGSIÁNOS ni des a ini A A SES 3
Sui Estrías ten. líneas: rectas, ¡11-14 en 1041 200. (3) M. distans
Mer Estrías sen «espiral! 15-208 10: 01500505000 (4) M. italica

1. Melosira granulata (Ehr.) Ralís var. granulata
Pl :0

Balís in Pritchard, Infus., p. 820 (1861).

Células cilíndricas unidas por la cara valvar formando largas
cadenas. Valvas planas con notorias punteaduras, borde dentado.
Ornamentación formada por líneas de puntos, rectas o algo es-
piraladas, 8-10 en 10 u. Diámetro valvar, 8-15 u.

Especie de aguas dulces y mixohalinas, estancadas o de poca
corriente. Presente en muestras del Río Bío-Bío, Laguna Pineda, Arro-
yo Leonera, Laguna La Posada y Laguna Lo Méndez, faltando sola-
mente en las muestras del Río Andalién. Particularmente en la La-
guna Lo Méndez se presentó siempre en gran cantidad y durante
todos los meses del año.

Distribución conocida para Chile: Puerto Montt (A.S.A., Lám.
181- fig. 57-58); Bahía Orange en Cabo de Hornos (Petit, 1889);
Posa entre Kark y Tweedie en Patagonia (Muller, 1909); Trípoli en

Mb UA

Isla de Chiloé (Frenguelli, 1930); Trípoli en Puyehue (Frenguelli,
1935); Lago Puyehue, Termas de Puyehue, Lago Rupanco, Lago Llan-
quihue, Estación Pellines (Krasske, 1939); Bahía de Valparaíso
(Krasske, 1941); Al S.W. de Bahía Inútil, Cabo Froward (Krasske,
1949); Lago Panguipulli, L. Faganano (Thomasson, 1955); Lago Villa-
rrica, L. Pichilafquén, L. Huilipilún, L. Quillehue, L. Calafquén- L.
Pellaifa, L. Rupanco, L. Puyehue, L. Llanquihue, L. Todos los Santos,
L. Lanalhue, Laguna Bonita (Thomasson, 1963); Lago Ranco, Lagu-
na Chica de San Pedro (Thomasson, 1963 y Rivera, 1970); Lagunas
Il y IU próximas a la Cordillera de Paine, Lago Quillehue (Asprey
et al., 1964); Lago Laja (Rivera, 1970); Lago Peñuelas (Navarro y
Avaria, 1971); Estero Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973); Bahía
de Coquimbo, Río Tubul (Rivera, 1974).

2. Melosira varians Agardh
Pig. Y

Agardh C.A., Consp. Crit. Diat., p. 64 (1832).

Células cilíndricas, unidas formando cadenas largas o cortas.
Valvas circulares, planas o levemente convexas, finamente puntea-
das. Frústulos corrientemente más largos que anchos, hialinos. Pa-
red muy finamente punteada, con una corrida de notorios puntos
cerca de la unión de las dos tecas. Diámetro 11-16 u.

Especie de aguas dulces y salobres, planctónica, pero a veces
bentónica, cosmopolita.

Presente durante casi todo el año en muestras del Río Andalién
y Río Bío-Bío, y en una sola muestra de la Laguna Lo Méndez.
Siempre se presentó en escasa cantidad.

Distribución conocida para Chile: Provincia de Santiago (Es-
pinosa, 1923; Negrete, 1964); Lago Fagnano (Thomasson, 1955); La-
go Villarrica (Thomasson, 1963); Lago Ranco (Rivera, 1967 y 1970);
Bahía de Concepción (Rivera 1969 y 1974); Lago Laja (Rivera, 1970);
Estero Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973).

3. Melosira distans (Ehr.) Kutzing var. distans
Señalada para la Laguna Chica de San Pedro por Rivera (1970).

4. Melosira italica (Ehr.) Kutzing var. italica
Senalada para la Laguna Chica de San Pedro por Rivera (1970).

Género CYCLOTELLA Kutzing

Clave para los taxa de Cyclotella.

1. Valvas con el área central hialina ................ (1) C. meneghiniana
1. Valvas con el área central ornamentada
El .medo' de nestrella.. .autetiaciardamna 2

2. Valvas de 5-25 u de diámetro; un punto aislado
AE STnitto de 10 SRA cana lo dci (2) C. stelligera
2. Valvas 32-35 u de diámetro; 10-12 puntos
irregularmente distribuídos en la parte
ande lis e fell o A o RI (3) C. stelligera
var major var. nova

1. Cyclotella meneghiniana Kutzing var. meneghiniana
Fig. 10

Kutzing, F.T., Bacil., p. 50, Lám. 30 fig. 68 (1844).

Frústulos rectangulares en vista conectival, suavemente ondu-
lados. Valvas provistas de fuertes costillas marginales, 8-9 en 10 u,
dejando al centro un gran espacio hialino, finamente punteado.
Diámetro valvar: 11-15 u.

Taxon de aguas dulces y mixohalinas, cosmopolita, tolerante
a polución orgánica.

Presente en muestras del Río Andalién, Río Bío-Bío, Laguna Pi-
neda y Laguna Lo Méndez, siempre en escasa cantidad y durante
los meses de primavera y verano.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de San Pedro de Ata-
cama (Frenguelli, 1934); Trípoli de Puyehue (Frenguelli, 1935); Cal-
buco, Vertiente cerca del Río Puelo, Fiordo de Reloncaví (Krasske,
1939); Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948); Lago General Carrera:
Cabo Froward, Isla Dawson, Al S.W. de Bahía Inútil (Krasske, 1949);
Lago Quillehue, L. Llanquihue (Thomasson, 1963); Santiago y alre-
dedores (Negrete, 1964); Bahía de Concepción (Rivera, 1969); Lagu-
na Chica de San Pedro (Rivera, 1970); Estero Lenga (Rivera en Ri-
vera et al., 1973); Bahía de Coquimbo, Isla Santa María (Rivera,
1974).

2. Cyclotella stelligera (Cleve £ Grunow) V. Heurck var stelligera
Señalada para la Laguna Chica de San Pedro por Rivera (1970).

3. Cyclotella stelligera var. major var. nova
Fig.--11

A varietate stelligera praecipue differt majori diametro
valvae, 32-35 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Río Bío-Bío.
DIAT-CONC 559, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas circulares, 32-35 u de diámetro, con costillas marginales
notorias, 10-11 en 10 u. Area central con una formación a modo de
estrella ¡un tanto irregular en forma, dejando más al centro un es-
pacio hialino donde existen 10-12 puntos irregularmente distribuidos.

17 E

Se diferencia de la variedad tipo principalmente por su mayor
tamaño y por poseer varios puntos irregularmente distribuidos en
el centro de la valva.

Cyclotella stelligera var. major var. nova se presentó exclu-
sivamente en el Río Bío-Bío, siempre con escasa abundancia y so-
lamente en los meses de enero y julio.

Orden ARAPHIDALES
Familia FRAGILARIACEAE
Género ASTERIONELLA Hassall

1. Asterionella formosa Hass. var. gracillima (Hantz.) Grun.
Figil2

Grunow, A., in Van Heurck- Syn. Diat. Belg., Lám. 51, fig. 22 (1881).

Valvas linear a linear-lanceoladas con extremos capitados y
de diferente tamaño pero en general más similares que en la va-
riedad tipo. Estrías finas, 22-23 en 10 u. Largo 65-72 u; ancho, 4 u.

Variedad de aguas dulces, especialmente presente en aquellas
de bajas temperaturas.

Se la encontró exclusivamente en una muestra del mes de
agosto recolectada en la Laguna La Posada; muy rara.

Distribución conocida para Chile: anteriormente había sido se-
nalada sólo para el Río Quenuir (Rivera, 1974).

Género CERATONEIS Ehrenberg

Clave para los taxa de Ceratoneis.
1. Valvas con el lado ventral casi recto, en general lineares,

largas Mudeslnadas ys cda lat (3) C. arcus var. linearis
IP Valvas “contrel “lado. ventral curvado» DAA DA g
2. Lado ventral suavemente cóncavo, algo giboso en la parte
MEQIE... ER. Secre debes. A Mer: E (1) C. arcus

2. Lado ventral fuertemente convexo, parte media muy gibosa
A O SN A AT: (2) C. arcus var. amphioxys

1. Ceratoneis arcus (Ehr.) Kutz. var. arcus
Fis LS

Valvas arqueadas, lado dorsal convexo y lado ventral cónca-
vo, dilatado en su parte media. Extremos atenuado-rostrados a sub-
capitados. Pseudorafe nítido, angosto. Estrías 15-18 en 10 u. Eje
apical 55-71 u; transapical 5,5-6,5 u.

Taxon de aguas dulces: especialmente en las frías y corren-
tosas, cosmopolita, indicadora de aguas con desperdicios fenólicos.

EAS

Presente en el Río Bío-Bío durante todo el año, a veces bastan-
te abundante, y en el Arroyo Leonera durante los meses de otoño
y primavera.

Distribución conocida para Chile: Provincia de Santiago (Es-
pinosa, 1923; Negrete, 1964); Lago Puyehue, Termas de Puyehue,
Calbuco, Río Puelo, Fiordo de Reloncaví, Lago Risopatrón, Afluente
del Lago Risopatrón, Río Pascua, Río Tronador, Río de Ventisquero
Eisach, Ventisquero Yacaf (Krasske, 1939); Bahía de San Vicente
(Krasske, 1941); Lago Riñihue, L. Panguipulli (Thomasson: 1955);
Río Cisnes (Asprey et al., 1964); Bahía de Concepción (Rivera, 1969
y 1974); Lago Ranco, L. Laja, Laguna Chica de San Pedro (Rivera,
1970); Bahía de Dichato, Estero Lenga, Isla Santa María, Río Pu-
deto (Rivera, 1974).

2. Ceratoneis arcus var. amphioxys (Rahb.) Brun
Señalado para el Estero Lenga por Rivera en Rivera et al., 1973.

3. Ceratoneis arcus var. linearis Holmboe
Señalado para el Estero Lenga por Rivera en Rivera et al., 1973.

Género DIATOMA Bory

Clave para los taxa de Diatoma.

1. Costillas menos de 5 en 10 u; valvas elípticas a elíptico-
aiijaono io le putear dde len (1) D. hiemale var. quadratum

1. Costillas 6-12 en 10 u; valvas lineares a linear-lanceoladas
A (2) D. tenue

1. Diatoma hiemale (Lyngb.) Heib. var. quadratum (Kutz.) Ross
Fig. 14

Ross, R., Trans. Roy. Soc., Ser. B, 234: 464 (1950).

Valvas elípticas a elíptico-lanceoladas. Costillas notorias, 4 en
10 u. Estrías finas, 14-15 en 10 u. Pseudorafe linear, nítido. Largo 27-
29 u; ancho 9-9.5 u.

Variedad de aguas dulces, en regiones montañosas y en zo-
nas bajas. Presente exclusivamente en una muestra de abril reco-
lectada en el Río Bío-Bío; muy rara.

Distribución conocida para Chile: Posa Kark, Arroyo Toro: Po-
sa Chico (Muller, 1909); Termas de Puyehue, Lago Rupanco, Cerro
en Pto. Varas, Calbuco, Río Puelo, Lago Risopatrón, Afluente del
Lago Risopatrón, Río Pascua, R. Tronador, R. de Ventisquero Eisach,
Ventisquero Yacaf (Krasske, 1939); Puyuhuapi (Krasske, 1941); Tie-
rra del Fuego (Cleve-Euler, 1948); San Francisco al norte de Pta.
Arenas, Cabo Froward, Al S.W. de Bahía Inútil, Río Alerce (Krasske,

Med (o

1949); Lago Riñihue: L. Panguipulli (Thomasson, 1955); Lago Qui-
llehue (Thomasson, 1963); Estero Lenga (Rivera en Rivera et al.,
1973); Bahía de Coquimbo (Rivera, 1974).

2. Diatoma tenue Agardh var. tenue
Fics La

Agardh, C.A., Sv. Bot., 7; Lám. 491, fig. 45 (1812).

Valvas linear a linear-lanceoladas con extremos suavemente
producidos, redondeados. Costillas notorias, 10-12 en 10 u. Pseudo-
rafe no visible. Largo 14-23 u; ancho 3-4,1 u.

Presente exclusivamente en el Río Bío-Bío durante verano y
otoño, siempre en escasa cantidad.

Distribución conocida para Chile: Posa entre Kark y Tweedie
(Muller, 1909); Lago Risopatrón, Afluente del Lago Risopatrón, Río
Pascua, Río Tronador, Cerca de Puyuhuapi (Krasske, 1939).

Género FRAGILARIA Lyngbye

Clave para los taxa de Fragilaria

1. Valvas con una dilatación unilateral del área central ..........
E ION 0. 10 URALEAO 40 LE (1) F. vaucheriae
2

Vo VMalvasisital “caracteristica, A A EE
2105 Walvas TIpalares, und. Entramos (2) F. construens var. exigua
DPS MO OATES 3
210 TEsirias” 12 0 "metos en LM cn tac (4) F. pinnata
Estas Sota On MI nta a
4-“Pseúdorafe angostó, LMear .imcacornonencinenenencstecioecis (5) F. capucina var.
lanceolata
4. Pseudorafe ancho, lanceolado ..........aaaaacaaaan (3) F. construens var.
venter

1. Fragilaria vaucheriae (Kutz.) Peters. var. vaucheriae
Fig. 16

Petersen, J., Bot. Not., 1/3:167, fig. 1 c-g (1938).

Valvas linear-lanceoladas con extremos más angostos, rostra-
do-redondeados. Area central usualmente a un solo lado de la val-
va, suavemente dilatada dándole al frústulo un aspecto asimétrico.
Pseudorafe angosto. Estrías paralelas o suavemente radiales, 13-14
en 10 u. Eje apical 28-30 u; transapical 5-5.5 u.

Fue encontrada en muestras de primavera y verano del Río
Bío-Bío, y en una muestra de primavera de la Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: había sido señalada sola-
mente para Calbuco (Krasske, 1939).

dy

2. Fragilaría construens (Ehr.) Grun. var. exigua (W.Sm.) Schulz
Mero 17

Schulz, P., Arch. Hydrobiol., 10:750, fig. 9-16 (1922).

Valvas tripolares, 9-10 u de largo, con los márgenes suave-
mente convexos y los polos suavemente capitado-redondeados. Es-
trías finas, 14-15 en 10 u.

Variedad de aguas dulces, en general muy escasa. En nuestro
material fue observada exclusivamente en una muestra de mayo de
la Laguna La Posada.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

3. Fragilaría construens var. venter (Ehr.) Grunow
Fig. 18

Grunow, A. in Van Heurck, Syn. Diat. Belg., Lám. 45, fig. 21 b, 22-23,
24 b, 26 a-b (1881).

Valvas lanceoladas a rómbicas, con extremos agudo-redondea-
dos a rostrados. Pseudorafe nítido, lanceolado. Estrías radiales, 17
en 10 u. Largo 8.5-15 u; ancho 3.5-5 u.

Variedad de aguas dulces, preferentemente oligotróficas o me-
sotróficas. En el material estudiado fue encontrada solamente en la
Laguna La Posada durante los meses de invierno; muy rara.

Distribución conocida para Chile: Posa Kark, Río Baguales y
sus afluentes, Arroyo Toro, Posa Chico, Arroyo junto a Laguna
Blanca (Muller, 1909); Trípoli a 2 km de Chorrillos (Frenguelli, 1929);
Trípoli de Calama; Trípoli en Isla de Chiloé (Frenguelli, 1930); Trí-
poli de San Pedro de Atacama, Trípoli en Puyehue (Frenguelli,
1935); Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948); A 67 y 100 km de Pta.
Arenas; Lago General Carrera (Krasske, 1949); Santiago y alrede-
dores (Negrete, 1964); Lago Ranco, Lago Laja (Rivera, 1970); Estero
Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973).

4. Fragilaria pinnata Ehr. var. pinnata
Fig. 119

Ehrenberg, C.G., Abh. Akad. Wiss. Berlin, 1841:415, Lám. 316, fig. 8,
(1843).

Valvas lineares a elípticas con extremos redondeados. Pseu-
dorafe angosto, linear a lanceolado. Estrías paralelas en la parte
media, radiales en los extremos, 10-11 en 10 u. Largo 7.5-8.5 u; an-
cho 3-3.5 u.

Taxon de aguas dulces, amplia distribución. Presente en una
muestra de mayo recolectada en la Laguna La Posada; escasa.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange en Cabo de
Hornos (Petit, 1889); Trípoli a dos km de Chorrillos (Frenguelli, 1929);

e al.

Trípoli de Calama (Frenguelli, 1930); Trípoli de San Pedro de Ata-
cama (Frenguelli, 1934); Trípoli en Isla Cailín en Chiloé (Frenguelli,
1935); Calbuco, Isla Poluqui; Lago Risopatrón, Afluente del Lago
Risopatrón, Río Pascua (Krasske, 1939); Al S.W. de Bahía Inútil,
Mallín Chileno, Río Alerce, Lago O'Higgins, Río Rubens, A 100 km
de Pta. Arenas, Isla Dawson, Lago Lynch, Lago General Carrera,
San Isidro en Cabo Froward, San Francisco al norte de Pta. Are-
nas (Krasske, 1949): Santiago y alrededores (Negrete, 1964).

5. Fragilaría capucina Desm. var. lanceolata Grunow

Señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,
1973.

Género MERIDION Agardh

1. Meridion circulare (Grev.) Ag. var. constricta (Ralfs) V. Heurck
Fig. 20

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belg., p. 161, Lám. 51, fig. 14-15 (1881).

Valvas en forma de cuña, con un extremo más ancho rostra-
do-capitado, y el otro angosto, agudo-redondeado. Costillas fuertes,
6-7 en 10 u. Estrías 15-16 en 10 u. Largo 19.5-24 u; ancho 4-6 u.

Variedad de aguas dulces y salobres; cosmopolita. Dos frús-
tulos observados en muestras del Río Bío-Bío; rara.

Distribución conocida para Chile: Río Baguales y sus afluentes
(Muller, 1909); A 67 y 100 km de Pta. Arenas, Cerca de Río Rubens,
Mallin Chileno (Krasske, 1949); Santiago y alrededores (Negrete,
1964); Bahía de Concepción (Rivera, 1969); Estero Lenga (Rivera
en Rivera et al., 1973).

Género OPEPHORA Petit

1. Opephora martyi Hérib. var. martyi
Eoal

Heribaud, J., Diat. Foss. Auvergne, 1:43, Lám. 8, fig. 20 (1902).

Valvas lanceolado-aovadas con extremos más o menos redon-
deados, uno de mayor tamaño que el otro. Estrías anchas, 8 en
10 u. Pseudorafe angosto. Eje apical 25-27 u; Transapical mayor
4-5 u.

Taxon de aguas mesotróficas en lagos y ríos. Las escasas cé-
lulas observadas provienen de una muestra recolectada en el mes
de marzo en el Río Andalién.

Distribución conocida para Chile: Calbuco, Río Pascua, Lago
Risopatrón, L. Rupanco, L. Llanquihue (Krasske, 1939).

Blas y

Género PLAGIOGRAMMA Greville

1. Plagiogramma interruptum (Greg.) Ralís
Pico dee

Ralfs in Pritchard, Infus., p. 774 (1861).

Frústulos rectangulares en vista conectival. Valvas lineares a

linear-lanceoladas con extremos redondeados. Pseudorafe angosto.
Estrías transversales finas, 24 en 10 u. Eje apical: 21-26 u; trans-
apical: 7 u.

Fue encontrada solamente en una muestra del mes de junio

recolectada en el Río Andalién.

Distribución conocida para Chile: Río Tubul, Río Quenuir y

Río Pudeto (Rivera, 1974).

Género SYNEDRA Ehrenberg

Clave para los taxa de Synedra.

:
1,
2

PS AEOOO

ha

200 0 PDROIIDDM

Parte media de la valva ensanchada, gibosa y general-
a e PEN o e AR me rca: Dot cta 101

Perntel mediorcno grasa só. ti 4
Estrías claramente punteadas, área central alcanzando siem-
pre: ambos márgenes, de.la” VOLVO. .....c.uoaoso reacia me 3

Estrías no punteadas, área central puede alcanzar ambos
márgenes de la valva o puede llevar cortas estrías; es-
AN II AA (1) S. socia
Pseudorate/ qm osto at reis ia ES (2) S. pulchella
Pseudorafe ancho, expandiéndose hacia el centro maana.
PCR PARES IN AA (3) S. pulchella var. lacerata
Valvas con una constricción en su parte media .......... 9
MEE ¡Si CONS ICI. tiirolaii O CO 6
ECM A (6) ulna vaz. ozyrhynchus
f. mediocontracta
Bstrias: Melendi Dira (6) S. ulna var. oxyrhynchus
Area central grande, más larga que ancha miii.
Area central pequeña o ausente ¡no más larga que ancha 8
Estrías 15 o menos en 10 u; valvas lanceoladas ..... (10) S. acus
Estrías 15 o más en 10 u, valvas lineares ............. (11) S. radians
Extremos claramente producidos, de variada forma ........ 9
Extremos no producidos, redondeados, área central peque-
Teo, ausente ca. dades se BO (7) S. ulna var. aequalis
Extremos levemente capitados, área central pequeña, es-
Maso Lem MO indus coló AA (5) S. ulna var. danica
Extremos ¡atenuiados; .0:Tostrados' elisa es orstorarica 10
Estrías 7-9 en 10 u; extremos rostrados; área central pe-
QUEnNa OD QUSBRÍS endo (8) S. ulna var. subaequalis

10. Estrías 8-12 en 10 u, generalmente 10; extremos atenuados
a rostrados; área central pequeña, generalmente cuadran-
A A A E PUNTA (4) S. ulna

1. Synedra socia Wallace var. socia
Pig. 23

Wallace, J., Not. Nat. Acad. Nat. Sci. Philadelphia, 331: 1, Lám. 1,
fig. 1 A-E (1960).

Valvas lanceoladas, contraídas en la parte media, luego di-
latadas; extremos atenuados, rostrado-capitados. Pseudorafe angos-
to. Area central alcanzando generalmente los márgenes de la val-
va a ambos lados. Estrías paralelas, 16-17 en 10 u. Eje apical 31-
33 u; trasapical 4-4.2 u.

Patrick (en Patrick 6 Reimer, 1966, p. 145) da una excelente
discusión y análisis de este taxon.

En el material estudiado se la encontró exclusivamente en
muestras de primavera del Arroyo Leonera, Laguna La Posada y
Laguna Lo Méndez.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

2. Synedra pulchella Ralís ex Kutzing var. pulchella
Señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al., 1973.

3. Synedra pulchella var. lacerata Hustedt
Fig. 24

Hustedt, F., in Schmidt, Atlas, Lám. 300. fig. 32-33 (1913).

Difiere de la variedad tipo por su ancha e irregular área axial.
Estrías paralelas, claramente punteadas, 15-16 en 10 u. Eje apical
115-117 u; transpical, 6-7 u.

Presente en la muestra de abril recolectada en el Río Bío-Bío.

Distribución conocida para Chile: se la había señalado sola-
mente para el Estero Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973).

4. Synedra ulna (Nitz.) Ehrenberg var. ulna
Elg"" "29

Ehrenberg, C.G., Ber. Akad. Wiss. Berlin, p. 53 (1836).

Valvas lineares con extremos atenuados, rostrados. Área axial
angosta, linear; área central más o menos cuadrada. Estrías para-
lelas, 10 en 10 u. Largo 180-254 u; ancho 6-7 u.

Taxon de aguas dulces y mixohalinas, tolerante a polución
orgánica; amplia distribución.

Presente durante todo el año en el Río Andalién y Río Bío-
Bío; en la Laguna Pineda, Arroyo Leonera y Laguna Lo Méndez
fue esporádica.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Calama (Frenguelli,
1930); Trípoli de San Pedro de Atacama (Frenguelli, 1934); Bahía
de Coliumo, B. de Dichato, Calbuco, Río Puelo, Lago Risopatrón,
L. Puyehue, Termas de Puyehue, Lago Rupanco, L. Llanquihue, Es-
tación Pellines, Pto. Montt (Krasske, 1939); Bahía de Valparaíso
(Krasske, 1941, Avaria 1965 y 1971); Mallin Chileno (Krasske, 1949);
Lago Panguipulli, L. Riñihue (Thomasson, 1955); Lago Villarrica, L.
Pichilafquén, L. Huilipilún, L. Quillehue, L. Calafquén, L. Pellaifa,
L. Llanquihue (Thomasson, 1963); Santiago y alrededores (Negrete,
1964); Laguna sin nombre próxima a la Cordillera de Paine (Asprey
et al., 1964); Bahía de Concepción (Rivera, 1969); Lago Ranco, L.
Laja, Laguna Chica de San Pedro (Rivera, 1970); Estero Putemún
(Avaria, 1970); Lago Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971); Estero
Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973); Bahía de Coquimbo (Rivera,
1974).

5. Synedra ulna var. danica (Kutz.) Van Heurck
Fig "26

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belg., p. 151 (1885).

Difiere de la variedad tipo por la forma de la valva que es
linear-lanceolada con extremos suavemente capitados, y por la for-
ma del área central que es dilatada transversalmente pero sin al-
canzar los márgenes de la valva. Largo 220-226; ancho 5-6 u; estrías
paralelas, 10 en 10 u.

Presente únicamente en la Laguna Pineda (otoño).

Distribución conocida para Chile: Arroyo junto a laguna Blan-
ca en Patagonia (Muller, 1909); Trípoli a 2 km de Chorrillos (Fren-
guelli, 1929); Trípoli de Calama, T. de Chiloé (Frenguelli, 1930);
Trípoli de San Pedro de Atacama (Frenguelli, 1934); Trípoli en Pu-
yehue (Frenguelli, 1935); Bahía de Coliumo, Lago Puyehue, L. Ru-
panco, Termas de Puyehue, Estación Pellines, Pelluco, Calbuco, Río
Puelo (Krasske, 1939); Isla Dawson, San Isidro en Cabo Froward
(Krasske, 1949); Lago Llanquihue (Krasske, 1939 y Thomasson, 1963);
Santiago y alrededores (Negrete, 1964).

6. Synedra ulna var. oryrhynchus (Kutz.) V.H. f. mediocontracta
(For.) Hustedt

Pig.;. 27
Hustedt, F., Rabenhorsts Krypt. Flora, 7(2):199, fig. 691 B,r (1932).

Difiere de la variedad tipo por presentar una constricción de la
valva en su parte media. Largo 72-92 u; ancho 6-6.5 u; estrías 12-
13 en 10 u. '

Presente en el Río Bío-Bío durante verano y otoño y en el Arro-
yo Leonera durante el otoño.

Distribución conocida para Chile: Lago Ranco (Rivera, 1970);
Estero Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973).

7. Synedra ulna var. aequalis (Kutz.) Hustedt
Señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al., 1973.

8. Synedra ulna var. subaeqqualis (Grunow) Van Heurck
Senalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al., 1973.

9. Synedra parasitica (W.Sm.) Hust. var. subconstricta
(Grev.) Hustedt

Fig) 28
Husteat, F., in Pascher, Súussw. Fl. Mitteleur., 10(2):161, fig. 195 (1930).

Valvas con una constricción en la parte central; extremos ate-
nuados, capitado-redondeados. Pseudorafe linear-lanceolado. Estrías
levemente radiales a paralelas, 17-18 en 10 u. Largo 22-24 u; an-
cho mayor 4.5-9.5 u.

Presente exclusivamente en muestras del Río Bío-Bío, siempre
en escasa cantidad.

No se la había señalado anteriormente para Chile.

10. Synedra acus Kutzing var. acus
Elige 29

Kutzing, F.T., Bacill., p. 68, Lám. 15, fig. 7 (1844).

Valvas angostamente lanceoladas con extremos redondeados
a subcapitados. Pseudorafe angosto, nítido. Area central grande, más
larga que ancha. Estrías paralelas, 13-15 en 10 u. Largo 75-140 u;
ancho 4-3 u.

Taxon de aguas dulces tolerante a aguas contaminadas, cos-
mopolita. Presente durante casi todo el año en la Laguna Pineda
y en una muestra de enero del Río Andalién y otra de marzo de la
Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: Posa Kark, Río Baguales y
sus afluentes, Posa Chico, Río Tres Pasos, Posa entre Kark y Tweedie
(Muller, 1909); Trípoli de Calama (Frenguelli, 1930); Trípoli de San
Pedro de Atacama (Frenguelli, 1934); Calbuco, Lago Risopatrón,
Lago Rupanco (Krasske, 1939); Cabo Froward (Krasske, 1949); La-
go Panguipulli, Lago Riñihue (Thomasson, 1955); Lago Pichilafquén,
L. Quillehue, L. Calafquén, L. Pellaifa, L. Llanquihue, L. Todos Los
Santos (Thomasson, 1963); Estero Lenga (Rivera en Rivera et al.,
1973).

LO

11. Synedra radians Kutzing var. radians
Fig. 30
Kutzing, F.T., Bacill., p. 64, Lám. 14, fig. 7 (1844).

Valvas lineares angostándose paulatinamente hacia los extre-
mos que son suavemente rostrados, redondeados. La parte central
de la valva, en algunos ejemplares, es levemente ensanchada. Area
central un poco más larga que ancha. Pseudorafe angosto, algo
dilatado en el área central. Estrías paralelas, notorias, con excep-
ción de aquellas del área central que son menos visibles. Estrías
15-16 en 19 u. Largo 75-112 u; ancho 45 u.

En muchos de los frústulos observados la parte central de la
valva es levemente ensanchada a ambos lados y las estrías del
área central son menos visibles que las otras. Esto concuerda con
el slide de Van Heurck N* 312, a pesar que la ilustración de Fatrick
(Patrick 6 Reimer 1965, Lám. 5, fig. 4) para esos mismos ejemplares,
no muestra estas características.

Taxon de aguas suavemente alcalinas. Fue encontrada en to-
dos los lugares muestreados siendo particularmente abundante en
la Laguna Lo Méndez. En el Río Andalién, Río Bío-Bío, Laguna Pi-
neda, Arroyo Leonera y Laguna La Posada se presentó esporádi-
camente durante el año.

Distribución conocida para Chile: se la había señalado sola-
mente para la Bahía Orange en Cabo de Hornos (Petit, 1889).

Orden RAPHIDIOIDALES

Familia EUNOTIACEAE
Género EUNOTIA Ehrenberg

Clave para los taxa de Eunotia.
1. Margen dorsal o ventral de la valva, o ambos, con on-

AHLACIONES st in 2

7 MÉTdenes, sin... ondulaciones urna E E 2

Z. Ondulaciones sobre ambos márgenes de la valva .......... 3
2. Lado dorsal llevando 2 ondulaciones ........ (1) E. pectinalis var.
minor

3. Lado dorsal con 3 o más ondulaciones, lado ventral con
una ondulación en la parte media ............. (2) E. pectinalis var.
undulata

3. Una ondulación en la parte media del lado dorsal y ven-
O A II A (3) E. major var. asiatica
4. Valvas 15-50 u de largo, estrías 8-13 en 10 u ..... (4) E. sudetica

4-/Welvas supeñores”a 308 mide largo treat do o)

5. Estrías 11-13 en 10 u; largo 87-120 u, extremos redondeados,
no claramente producidos ............... (5) E. flexuosa var. linearis

5. Estrías 15-18 en 10 u; largo 58-112 u; extremos claramente
PIOCUCIAOS .eiicricacass (5) E. fallax var. gracillima f. densistriata

ES 7 y Ga

1. Eunotia pectinalis var. minor (Kutz.) Rabh.
Lig: 0%

Rabenhorst, L., Fl. Europaea Alg., Sec. 1, p. 74 (1864).

Valvas levemente arqueadas, lado ventral cóncavo y lado dor-
sal convexo llevando dos ondulaciones. Extremos más angostos, sub-
capitados. Nódulos terminales nítidos, pequeños, a cierta distancia
de los extremos. Estrías 13-15 en 10 u en el centro de la valva,
algo más numerosas hacia los extremos. Largo 29-39 u; ancho
45 u.

Taxon presente durante todo el año en la Laguna Pineda, y en
una muestra de mayo del Río Andalién.

Distribución conocida para Chile: Ramuncho, Río Puelo, Puyu-
huapi, Calbuco, Al S.W. del Pto. de Puyuhuapi, Fiordo de Relon-
caví, Lago Risopatrón, Río Pascua, Río de Ventisquero Eisach (Krass-
ke, 1939); Río Alerce, San Isidro en Cabo Froward, Al S.W. de
Bahía Inútil, Isla Dawson (Krasske, 1949).

2. Eunotia pectinalis var. undulata (Ralís) Rabh.
15 La AS

Rabenhorst, L., Fl. Europaea Alg., Sec. 1, p. 74 (1864).

Valvas levemente arqueadas con tres o más ondulaciones en el
lado dorsal y una en la parte media del lado ventral. Extremos
atenuados, truncado-redondeados, de la mitad del ancho de la val-
va en su parte media. Nódulos terminales a cierta distancia de los
extremos. Estrías notorias, 11-12 en 10 u. Una línea hialina se en-
cuentra cerca del lado ventral de la valva interrumpiendo a las
estrías. Largo 70-73 u; ancho 8-9 u.

Variedad de aguas dulces especialmente en aquellas con bajo
contenido mineral. Fue encontrada en la Laguna Pineda, Arroyo
Leonera y Laguna La Posada; escasa.

Distribución conocida para Chile: Trípoli en Puyehue (Frengue-
lli, 1935), Calbuco (Krasske, 1939); Estero Lenga (Rivera en Rivera
et al., 1973); Bahía de Concepción (Rivera, 1973).

3. Eunotia major (W.Sm.) Rabh. var. asiatica Skvortzow
Elaq.1 183
Skvortzow, B., Alp. Diat. South China, p. 40, Lám. 2, fig. 11 (1929).
Syn.: Eunotia monodon Ehr. var. asiatica Skv., Bull. Geol. Survey

Tyosen, 12:18, Lám. 1, fig. 25, 33; Lám. 2, fig. 7, Lám. 3,
fig. 1 (1936).

Valvas lineares, a veces levemente curvadas, con la parte cen-
tral dilatada en el lado dorsal y ventral. Extremos capitados o sub-
capitados. Estrías paralelas, 7-9 en 10 u. Largo 120-190 u; ancho
8-11 u.

Eunotia major es a menudo colocada como una variedad de
E. monodon. Creo que deben considerarse en el grupo “major” a
todas las formas más rectilíneas, y en el grupo "monodon” a las
formas más arqueadas. Un excelente análisis de este tema lo da
Patrick (Patrick 6 Reimer, 1966, p. 196).

Fue encontrada esporádicamente en muestras del Río Anda-
lién y Laguna Pineda.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

4. Eunotia sudetica O. Muller var. sudetica
Fig. 34

Muller, O., Forschungsber. Biol. Stat. Plón, 6:59, Lám. 3, fig. 25-26
(1898).

Valvas con el lado ventral cóncavo y el lado dorsal convexo,
con extremos diferenciados, rostrado-atenuados. Nódulos terminales
a cierta distancia de los extremos, nítidos. Estrías muy notorias, 13
en 10 u. Largo 31-32 u; ancho 45 u.

Taxon muy cercano a E. incisa de la cual se diferencia por
sus gruesas estrías y por los extremos claramente diferenciados del
resto de la valva.

Las escasas células observadas provienen de una muestra de
mayo de la Laguna La Posada.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

5. Eunotia flexuosa (Bréb.) Kutz. var. linearis Okuno
Fig. 35

Okuno, H., A. Foss. Diat. Jap. Diat. Dep., p. 31, Lám. 23, fig. 18 (1952).

Valvas angostas, linear-lanceoladas con extremos subredondea-
dos. Nódulos polares pequeños, cercanos a los extremos; una del-
gada y corta línea se extiende de los polos hacia el centro de la
valva. Estrías notorias, 12-13 en 10 u. Largo 90-120 u; ancho 3.54.5 u.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién, Arro-
yo Leonera y Laguna La Posada, con excepción de la Laguna Pi-
neda donde se la encontró durante todo el año.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

ae,

6. Eunotia fallax Cl. var. gracillima Krass. f densistriata
Gonz. 4 Gandhi
Fig.. 36

Gonzalves 4 Ganahi, Jour. Ind. Bot. Soc., 31(3): 132, fig. 30 (1952).

Valvas angostas, arqueadas, lado dorsal convexo y lado ven-
tral cóncavo, angostándose hacia los extremos que son claramente
producidos, redondeados. Nódulos polares pequenos, a cierta dis-
tancia de los extremos. Una delgada y corta línea se extiende des-
de los nódulos hacia el centro de la valva. Estrías finas, 15-17 en
Mae Largo" 77-112 1: ancho. Z:.9-9.0) UU:

Taxon presente exclusivamente en la Laguna Pineda durante
los meses de verano, otoño e invierno.

Distribución conocida para Chile: ha sido señalada para el Es-
tero Lenga por Rivera (en Rivera et al., 1973) donde el autor in-
dicó que el largo de los frústulos era algo superior al señalado por
Gonzalves 4 Gandhi. Nuevamente se repite esta característica en
el material de la Laguna Pineda.

Orden MONORAPHIDALES

Familia ACHNANTHACEAE
Género ACHNANTHES Bory

Clave para los taxa de Achnanthes.

1. Taxon preferentemente de aguas saladas; 7-9 estrías en
E ARA e AR SE E AN (1) A. brevipes

"Texaiipicamente de Aguas. QUICSS mtrs Zz

2. Valva con pseudorafe llevando una marca en forma de
herradura,.a.. un. dado. .enjla.mitad, de la valva ... tot 3

INV con: pseudorale «sia ala. (IMOmEctritoen ra aa a

3. Extremos subrostrados a rostrados . (3) A. lanceolata var. dubia

3 ciExtremos nes claraménte; producidos cl. 4

4. Valvas típicamente elípticas ...... (4) A. lanceolata var. elliptica

4. Valvas lanceoladas; extremos redondeados ...... (2) A. lanceolata

5. Estrías 11-18 en 10 u, lineadas; valvas elípticas con extre-

mos»obtusoredondeados: 10. 4 a aalica.. aa. (5) A. pinnata
59 Estriasomásyde (20..en M0: ui no.) lineadas!!.. HMC aoE 6
). Estrías 20-21 en 10 u; valvas linear-elípticas con extremos
Siberia AN ARCA AA (6) A. hungarica
6. Estrías 24-25 en 10 u; extremos claramente producidos, sub-
tostados afrestrades aramaoaciola als (7) A. biasolettiana

NO q

1. Achnanthes brevipes Acardh var. brevipes
PO S97

Agardh, C.A., Syst. Alg., p. 1 (1824).

Valvas generalmente lineares a linear-elípticas, a veces con-
traídas en la parte central, y con extremos amplios, redondeados.
Valvas fuertemente ornamentadas de puntos de forma rectangular,
9-10 en 10 u, los cuales forman líneas, 8-9 en 10 u. Valva superior
lleva un pseudorate de posición excéntrica; valva inferior con un
rafe notorio; área central dilatada en estauro que alcanza los már-
genes de la valva. Largo 31-65 u; ancho 15-30 u.

Taxon cosmopolita, común en estuarios, generalmente litoral,
sésil. Fue encontrada en una muestra de marzo recolectada en el
Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Trípoli del salar de Ollagúe;
Trípoli del salar de Punta Negra; Trípoli del salar de Atacama
(Frenguelli, 1929); Calbuco, Afluente del Lago Risopatrón, Río Pas-
cua, Cerca de Puyuhuapi, Ramuncho, Isla Llancahue (Krasske,
1939); Dichato, Puyuhuapi (Krasske, 1941).

2. Achnanthes lanceolata (Bréb.) Grunow var. lanceolata
Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,

1973.

3. Achnanthes lanceolata var. dubiíia Grunow
Fig. 38-39

Grunow, A., in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet-akad. Handl., N.F., 17(2):
23 (1880).

Valvas elípticas con extremos suavemente producidos, subros-
trados a rostrados. Area axial angosta, linear; área central redon-
deada. Rafe filiforme con los extremos distales curvados en la mis-
ma dirección. Estrías 13-16 en 10 u. Largo 10-15 u; ancho 4.5-3.5 u.

Variedad de aguas dulces con amplio rango de tolerancia a
las condiciones del medio. Presente en forma esporádica en el Río
Andalién, Río Bío-Bío, Arroyo Leonera y Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: Río Baguales, Arroyo Toro,
Posa Kark (Muller, 1909); Bahía de Coquimbo (Rivera, 1974).

4. Achnanthes lanceolata var. elliptica Cleve

Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,

1973.

5. Achnanthes pinnata Hustedt var. pinnata
Fig. 40-41
Hustedt, F., in Hedin, Southern Tibet, 6(3):123, Lám. 9, fig. 15-18
(1922): a

Valvas elípticas con lados suavemente convexos y extremos
cbtuso-redondeados. Valva con rafe: rafe filiforme, derecha, con los
extremos proximales suavemente dilatados. Area axial linear o le-
vemente lanceolada; área central ausente. Estrías radiales, lineadas.
Valva con pseudorafe: pseudorafe linear-lanceolado, angosto. Estrías
radiales, lineadas. Largo 12-14 u; ancho 5-6 u; estrías 11-12 en 10 u
en ambas valvas.

Las células encontradas en el material estudiado presentan
los ejes apical y transapical ligeramente de mayor tamaño a los
valores señalados para este taxon. Sin embargo el mismo Hustedt
(1938, p. 201) señaló haber encontrado algunos frústulos cuyo eje
apical medía 13 u, es decir, tal como los por nosotros encontrados.
El número de estrías es también diferente pues siendo señaladas
como de 14-18 en 10 u, las células observadas en Concepción pre-
sentaron 11-12 estrías en 10 u. El resto de las características co-
rresponde perfectamente con el taxon de Hustedt.

Especie de aguas dulces, preferentemente en arroyos y ríos.
Fue encontrada en muestras de otoño, invierno y primavera del
Arroyo Leonera, y en una muestra de septiembre de la Laguna
La Posada.

Distribución conocida para Chile: se la había señalado exclu-
sivamente para el Lago Llanquihue (Krasske, 1939).

6.Achnanthes hugarica (Grun.) Grunow. var. hungarica
Fig. 42

Grunow in Cleve 4 Grunow, Sv. Vetakad. Handl., N.F., 17(2):20
(1880).

Valvas linear-elípticas con extremos obtusos, subcuneados. Val-
va con Rafe: área axial linear, angosta; área central ancha, dila-
tándose hacia los lados de la valva a los que alcanza; rafe fili-
forme, extremos distales curvados en distinta dirección; estrías ra-
diales, finas. Valva con Pseudorafe: pseudorafe angosto; estrías ra-
diales; área central igual a la otra valva pero llevando cortas es-
trías en el margen y generalmente a un solo lado. Estrías 20-21 en
10 u en ambas valvas. Largo 22-23 u; ancho 7-7.5 u.

Taxon de aguas dulces o levemente salobres. Muy pocas célu-
las fueron observadas en el material estudiado, todas provienen de
una muestra de enero del Río Bío-Bío.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange (Petit, 1889);
Trípoli de Calama (Frenguelli, 1930); Trípoli de San Pedro de Ata-
cama (Frenguelli, 1934); Lago Puyehue, L. Rupanco, L. Llanquihue,
Calbuco, Fiordo de Reloncaví, Lago Risopatrón, Afluente del Lago
Risopatrón, Río Puelo (Krasske, 1939); Río Alerce (Krasske, 1949);
Estero Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973).

A

7. Achnanthes biasolettiana (Kutz.) Grunow var. biasolettiana

Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,
1973.

Género COCCONEIS Ehrenberg

Clave para los taxa de Cocconeis.
1. Pseudorafe linear, angosto; estrías 18-25 en 10 U mnacaccnacaco

RO A E A (1) C. placentula var. euglypta
1. Pseudorafe lanceolada; estrías 15-16 en 10 u . (2) C. thumensts

1. Cocconeis placentula Ehr. var. euglypta (Ehr.) Grunow
Fig. 43

Grunow A., Diat. Fr. J. Land, Lám. 1, fig. 3 (1884).

Valvas elípticas. La valva con pseudorafe posee varios espa-
cios hialinos longitudinales, algo irregulares, que cortan a las es-
trías. Pseudorafe nítido, linear. Valva con rafe tal como en la va-
riedad tipo. Estrías 23-24 en 10 u. Largo 14-19 u; ancho 8-11 u.

Variedad de aguas dulces y salobres, epífita. Fue encontrada
en todas las muestras del Río Andalién, Río Bío-Bío y del Arroyo
Leonera, y esporádicamente se la encontró en la Laguna La Po-
sada, y Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: Trípoli en Puyehue (Frengue-
1li, 1935); Bahía de Coquimbo, B. de Dichato, B. de Concepción, Isla
Santa María, Río Tubul, R. Quenuir, R. Pudeto, Golfo de Quetal-
mahue (Rivera, 1974); Estero Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973).

2. Cocconeis thumensis A. Mayer var. thumensis

Fue señalada para la Laguna Chica de San Pedro (Rivera,
1970).

Género RHOICOSPHENIA Grunow

1. Rhoicosphenia curvata (Kutz.) Grun. ex Rabh. var. curvata
Fig. 44

Rabenhorst, L., Fl. Europaea Alg., p. 112, 342 (1864).

Frústulos arqueados en vista conectival. Valvas cuneiformes con
estrías transapicales notorias, 13-14 en 10 u al centro de la valva
y 1/-20 en 10 u en los extremos. Rafe derecha, encerrada en un
área axial linear, angosta; área central redondeada. Largo 30-36 u;
ancho 4-3 u.

Taxon de aguas dulces y mixohalinas, epífita. Presente duran-
te todo el año en el Río Andalién y Río Bío-Bío, y esporádicamente
en el Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange (Petit, 1889);
San Vicente, Lago Puyehue, L. Rupanco, L. Llanquihue, Calbuco

-— yy —

(Krasske, 1939); Bahía de Dichato (Krasske, 1941, Rivera, 1974); San-
tiago y alrededores (Negrete, 1964); Lago Laja (Rivera, 1970); Bahía
de Concepción (Rivera, 1969 y 1974); Bahía de Coquimbo, Río Tu-
bul, R. Quenuir, R. Pudeto, Estero Lenga, Isla Santa María y Golfo
de Quetalmahue (Rivera, 1974).

Orden BIRAPHIDALES

Familia NAVICULACEAE
Género DIPLONEIS Ehrenberg

1. Diploneis subovalis Cleve var. subovalis
Fig. 45

Cleve, P.T., Sv. Vetakad. Handl., n.f., 26(2):96, Lám. 1, fig. 27 (1894).

Valvas elípticas con extremos redondeados. Nódulo central gran-
de, redondeado. Rafe derecho. Costillas radiales, notorias, 10-11 en
10 u, formadas de una doble corrida de alvéolos. Largo 25-41 u;
ancho 12-19 u.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién, Río
Bío-Bío, Laguna Pineda, Arroyo Leonera y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Ramuncho, San Vicente, La-
go Rupanco, L. Llanquihue, Calbuco, Río Puelo, Lago Risopatrón,
Afluente del Lago Risopatrón (Krasske, 1939); Tierra del Fuego (Cle-
ve-Euler, 1948); Isla Dawson, Lago Lynch, Al S.W. de Bahía Inútil,
A 67 y 100 km de Pta. Arenas, Lago O'Higgins, Mallin Chileno
(Krasske, 1949); Bahía de Concepción (Rivera, 1969); Laguna Chica
de San Pedro (Rivera, 1970); Estero Lenga (Rivera en Rivera et al.,
1973; Rivera, 1974); Isla Santa María, Río Tubul, Río Quenuir, Río
Pudeto, Golfo de Quetalmahue (Rivera, 1974).

Género FRUSTULTIA Rabenhorst

Clave para los taxa de Frustulia.

1. Cordones silíceos que encierran la rafe levemente excén-

tricos; nódulo central alargado ................. (1) F. rhomboides var.
amphipleuroides
HL. Cordenes Híiceós NO eXCÓMITCOS e cmnenaiclrain erroneo cd
2. Valvas lineares a linear-lanceoladas ...........ocooaaoocccaconaresnorrrrenessrasenss 3
2. Valvas elíptico-lanceoladas a rómbico-lonceoladas; márge-
nes suavemente ondulados; extremos TOSÍTUADOS eoncocccnnaococccacccanns
Y Y SAA A LR (3) F. patrickú sp. nova
3. Extremos subrostrados, redondeados ecconccocncocanno (4) F. vulgaris
9” Extemos tapados aa ciacicenes (2) F. rhomboides var. capitata

1. Frustulia rhomboides (Ehr.) D. Toni var amphipleuroides
(Grun.) Cleve
Fig. 46

Cleve, P.T., Sv. Vetaakad. Handl., n.f., 26(2):123 (1894).

Difiere de la variedad tipo por presentar los cordones silíceos
que rodean a la rafe levemente arqueados, excéntricos. Nódulo
central grande, alargado. Estrías transversales 24 en 10 u. Largo
130-146 u; ancho 24-26 u.

Muy rara en el material estudiado, presente esporádicamente
en muestras del Río Bío-Bío.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

2. Frustulia rhomboides var. capitata (A. Mayer) Patrick

Señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,

1973.

3. Frustulia patrick sp. nova
Fig. 48

Valvae ellipticae-lanceolatae usque rhombicae-lanceolatae,
lateribus leniter undulatis, apicibus rostratis-rotundatis. Area
centralis dilatatior area axiali, in medio constricta. Striis
transversalibus 32-33 in 10 u, parallelis in centro valvarum,
convergentibus leniter prope apices, parallelis usque diver-
gentibus leniter apicibus. Striae longitudinales 26-28 in 10 u.
Longitudo 24-30 u. Latitudo 13-16 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Laguna Pineda.
DIAT-CONC 720, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas elíptico-lanceoladas a rómbico-lanceoladas, con los már-
genes suavemente ondulados y extremos claramente rostrados, re-
dondeados. Area axial angosta; área central más ancha y con una
notoria constricción en su parte media. Rafe delgada, filiforme, con
los extremos proximales distantes uno del otro. Estrías finas; estrías
transversales 32-33 en 10 u, paralelas en la mayor parte de la val-
va, cerca de los extremos son suavemente convergentes, para ser
paralelas o suavemente divergentes en los extremos mismos. Estrías
longitudinales 26-28 en 10 u. Largo 40-60 u; ancho 13-16 u.

Este taxon es cercano a la inválida F. Franguelli (Manguin,
1964) de la cual difiere por la forma de los extremos valvares que
son claramente rostrados, y por los lados de la valva que son le-
vemente ondulados. Difiere también de la inválida F. neocaledonica
(Manguin, 1962) por la forma del área central y por la clara dife-
renciación entre la separación de las estrías transversales y lon-
gitudinales.

A

Frustulia patrick sp. nova fue encontrada en muestras de
la Laguna Pineda, Río Andalién, Arroyo Leonera, Laguna La Posa-
da y Laguna Lo Méndez. En la Laguna Pineda se la encontró du-
rante todo el año, a veces bastante abundante; en los otros luga-
res su presencia fue esporádica.

Este taxon está dedicado al Dr. Ruth Patrick, Jefe del Departa-
mento de Limnología de la Academia de Ciencias Naturales de Fi-
ladelfia, Estados Unidos.

4. Frustulia vulgaris (Thw.) De Toni var. vulgaris
Pic.)

De Toni, Syll, Alg., 2(1): 280 (1891).

Valvas linear-lanceoladas con extremos subrostrados, redondea-
dos. Rate derecha. Area central redondeada. Estrías finas, suave-
mente radiales al centro de la valva y levemente convergentes ha-
cia los extremos, 24 en 10 u al centro y 34 en 10 u en los extremos.
Largo 49-53 u; ancho 8.5-10 u.

Taxon de aguas dulces, especialmente en aquellas con bajo
contenido mineral. Fue encontrada en el Río Andalién, Río Bío-Bío,
Laguna Pineda, Arroyo Leonera, Laguna La Posada y Laguna Lo
Méndez.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Dichato, B. de Co-
liumo, San Vicente, Corral, Termas de Puyehue, Lago Llanquihue,
Calbuco, Isla Poluqui, Río Pascua, Cerca de Puyuhuapi (Krasske,
1939); Bahía de Valparaíso (Krasske, 1941); A 67 km de Pta. Arenas,
Monte Tronador, Mallin Chileno (Krasske, 1949); Estero Lenga (Ri-
vera en Rivera et al., 1973); Río Tubul (Rivera, 1974).

Género AMPHIPLEURA Kutzing

1. Amphipleura lindheimeri Grunow var. lindheimeri

Fue señalada para la Laguna Chica de San Pedro (Rivera,
1970) y para el Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973).

2. Amphipleura lindheimeri Grunow var. neotropica Frenguelli
Fig. 49

Frenguelli, J., Anal. Mus. Nac. Hist. Nat., 37: 418, Lám. 4, fig. 12
(1933).

Se diferencia de la variedad tipo por el aspecto de sus estrías
que son suavemente onduladas y por la forma del cordón silíceo
en el centro de la valva. Estrías transversales 24-26 en 10 u, menos
marcadas que las longitudinales 18-22 en 10 u. Largo 181-195 u;
ancho 28-30 u.

=3%Bb=

Los escasos frústulos observados provienen del Río Andalién
y del Río Bío-Bío. Ellos difieren levemente de la descripción de
Frenguelli (loc. cit.) en el mayor número de estrías transversales y
longitudinales, aún cuando caen dentro de los valores señalados
por ese autor. El resto de las características concuerda plenamente
con las señaladas para la variedad neotrópica.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

Género GYROSIGMA Hassall

Clave para los taxa de Gyrosigma.

l. Area axial y rafe excéntricas, al menos en la parte ter-
A A A a 2

1. Area axial y rafe centrales; estrías transversales 25 en 10 u;
estrías longitudinales 27-30 en 10 u ...... (1) G. eximiordes sp. nova

2. Estrías transversales 26-30 en 10 u, longitudinales 38-40 en

TNA (OIGOCridoo. ESDSTA AUDE pS Ela (2) G. obscurum
2. Estrías transversales 18-21 en 10 u, longitudinales 20-24 en
IPPO (OO A iia (3) G. spencert

1. Gyrosigma eximioides sp. nova
FIG. JU

Valvae lineares usque lineare-lanceolatae, leniter sigmoides.
Area axialis et rapha centralis. Rapha apicibus proximali-
bus rectis, apicibus distalibus excentricis. Striis tranversa-
libus 25 in 10 u; striis longitudinalibus 27-30 in 10 u. Lon-
gitudo 81-92 u; latitudo 11-12 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Arroyo Leonera.
DIAT-CONC 684. Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas linear a linear-lanceoladas, suavemente sigmoides; ex-
tremos suavemente disminuidos, sin o con muy poca forma de "pico
de loro”. Area axial y rafe centrales, debilmente sigmoides. Extre-
mos proximales de la rafe no curvados en direcciones opuestas.
Nódulos polares excéntricos, a cierta distancia del extremo de la
valva y de una forma característica. Area central lanceolada- elíp-
tica. Estrías transversales un poco más notorias que las longitudi-
nales; estrías transversales 25 en 10 u, estrías longitudinales 27-30
en 10 u. Largo 81-92 u; ancho 11-12 u.

Presenta algunas características de G. eximium (Thw.) Boyer
emend. Giffen (1970, Beih. Nova Hedwigia, 31:277, Lám. 3, fig. 37-38),
tales como el número y orientación de las estrías, la forma del
área central y de los nódulos polares, y un cierto parecido en el
contorno valvar. Sin embargo las siguientes características la se-

BUEN MA

paran claramente de ella: la rafe y el área axial son de posición
central, los extremos proximales de la rafe no son curvados en
direcciones opuestas y la forma de los extremos valvares es dife-
rente. En G. eximioides sp. nova los lados se adelgazan sua-
vemente hacia los extremos, casi sin aspecto de "pico de loro”.

Gyrosigma eximioides sp. nova fue encontrada en muestras
recolectadas en el Arroyo Leonera y en el Río Bío-Bío, siempre en
escasa cantidad y esporádicamente durante el año.

2. Gyrosigma obscurum (W.Sm.) Griff. £ Henfr. var. obscurum
Hay OT

Griffith 6 Henfrey, Microgr. Dict., 1% ed., p. 302, Lám. 11, fig. 27
(1856).

Valvas fuertemente arqueadas, lineares, débilmente sigmoides
debido a la curvatura de los extremos; extremos suavemente pro-
«ducidos, redondeados. Rafe fuertemente sigmoide, excéntrica, muy
cercana al margen valvar hacia los extremos; extremos proximales
de la rafe derechos. Area central elíptica-lanceolada; nódulos ter-
minales insconspicuos. Estrías. transversales onduladas, notorias, 30
en 10 u. Estrías longitudinales muy finas, difíciles de observar, al-
rededor de 38 en 10 u. Largo 112 u; ancho 13.5 u.

Un solo frústulo observado en una muestra de abril recolecta-
da en la Laguna La Posada.

No había sido anteriormente señalada para Chile.

3. Gyrosigma spenceri (Quik.) Griff. 4 Henfr. var. spencer:
Pig, 92

Griffith 4 Henfrey, Microgr. Dict., 19 ed., p. 303, Lám. 11, fig. 17 (1856).

Valvas lanceoladas, suavemente sigmoides, con extremos mós
angostos, redondeados. Rafe levemente curvada, extremos proxima-
les curvados en distinta dirección. Area axial levemente curvada;
área terminal excéntrica; área central pequeña. Estrías finas, las
transversales 20-21 en 10 u, las longitudinales 20-23 en 10 u, ambas
igualmente visibles. Largo 99-105 u; ancho 13-14 u.

Taxon cosmopolita, principalmente en aguas estancadas, se-
ñalada para la costa litoral según Krasske, 1939.

Bastante escasa en el material estudiado, presente en el Río
Andalién y en la Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: San Vicente (Krasske, 1939);
Lago Laja, Laguna Chica de San Pedro (Rivera, 1970).

+ E

Género STAURONEIS Ehrenberg

Clave para los taxa de Stauroneis.

l. Valvas con extremos claramente capitados ..ciinnnnnccccccconan 2
lleWelveas: con . extremos de Obra, ÍOrMA divina tia iemitrcmestrari bicapa 4

BN Valvas de' ládos” pardlelos "o... ccncunairanacani (3) S. anceps f. linearis
almas ide lados COMVENOS" nas itscosta rcoorerciniias 3

3. Valvas anchas, extremos rostrados a capitados ........ (1) S. anceps
3.

Valvas alargadas, extremos claramente capitados

5 CRT CARO O (2) S. anceps f. gracilis
E Estemtor incompleto; regul o toa

probar cion ia. (4) S. turfosa var. reimeri var. nova

CITA ce o RAMA TE O RAS 9
A Bras t18-20 en PI Uco (6) S. phoenicenteron f. gracilis
SE Stias menos HUMEeTrosaS enmciianansinnimatamtment (5) S. phoenicenteron

1. Stauroneis anceps Ehrenberg var. anceps
¡e E)

Ehrenberg, C.G., Abh. Akad. Berlin Physik, 1841, p. 34, Lám.- 2,
fig. 1, 18 (1843).

Valvas linear-lanceoladas con extremos claramente producidos,
rostrados a capitados. Rafe derecha, angostándose hacia los extre-
mos proximales y distales; extremos distales curvados en la misma
dirección. Area axial más o menos linear, angostándose hacia los
extremos de la valva; área central dilatada transversalmente al-
canzando los bordes de la valva. Estrías radiales, nítidamente pun-
teadas, 25 en 10 u. Largo 33-35 u; ancho 8-9 u.

Taxon indicador de aguas con alta acidez. Fue encontrada so-
lamente en muestras de invierno de la Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de San Pedro de Ata-
cama (Frenguelli, 1934); Puerto Montt, Calbuco, Puyuhuapi, Río Pas-
cua (Krasske, 1939); Santiago y alrededores (Negrete, 1964); Bahía
de Concepción (Rivera, 1969); Río Tubul (Rivera, 1974).

2. Stauroneis anceps í. gracilis Rabenhorst
Fig. 54

Rabenhorst, L., Fl. Europaea Alg., Sec. 1, p. 247 (1864).

Valvas elípticolanceoladas adelgazándose suavemente hacia
los extremos que son capitados. Estrías radiales en toda la valva,
punteadas, 18-20 en 10 u. Las demás características son iguales a
las de la variedad tipo. Largo 62-76 u; ancho 10-13.5 u.

Escasos frústulos observados en el material de Concepción,
fue encontrada en la Laguna Pineda y en la Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Posa Chico en Patagonia
(Muller, 1909); Trípoli de San Pedro de Atacama (Frenguelli, 1934);
Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948).

3. Stauroneis anceps f. linearis (Ehr.) Hustedt
Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,

1973.

4. Stauroneis turfosa Tarn. á Jit. var. reimeri var. nova
EIA O)
Differt varictate turfosa per formam valvarum lineare-lan-

ceolatarum, apicibus acuto-rotundis. Striis radiatis, 18-19
in 10 u. Longitudo 72-76 u. Latitudo 13-14 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Arroyo Leonera.
DIAT-CONC 682, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas linear-lanceoladas disminuyendo paulatinamente hacia
los extremos que son agudos, redondeados. Area axial abriéndose
paulatinamente hacia el centro de la valva donde alcanza a ser de
1/4 del ancho de la valva, luego se expande en el área central.
Fascia de forma irregular, expandiéndose hacia los márgenes don-
de existen estrías de largo irregular, en general un lado es más
redondeado que el otro. Rafe ancha, angostándose hacia ambos
extremos; extremos distales curvados en la misma dirección, extre-
mos proximales redondeados y ligeramente curvados hacia un mis-
mo lado de la valva. Estrías fuertemente radiales en toda la valva,
punteadas; puntos grandes y notorios, 21-24 en 10 u. Estrías 18-19
en 10 u. Largo 72-76 u; ancho 13-14 u.

Se diferencia de la variedad tipo principalmente por la forma
de la valva y por su menor tamaño. Características tales como nú-
mero de estrías, forma del área axial, forma del estauro, y forma
de los extremos de la raíe concuerdan plenamente con el taxon
de Tarnavschi y Jitariu.

Fue encontrada exclusivamente en el Arroyo Leonera, esporá-
dica durante el año.

Stauroneis turfosa var. reímeri var. nova está dedicada al
Dr. Charles Reimer, excelente diatomólogo, Curador del Herbario
Diatomológico del Departamento de Limnología de la Academia
de Ciencias Naturales de Filadelfia, Estados Unidos.

5. Stauroneis phoenicenteron (Nitz.) Ehr. var. phoenicenteron
Fue señalada para la Bahía de Concepción por Rivera, 1969.

a ARE

6. Stauroneis phoenicenteron f. gracilis (Ehr.) Hustedt
Elim 318

Hustedt, F., in Pascher, Sissw. Flora Mitteleur., 10(2): 255 (1980).

Valvas lanceoladas con extremos atenuado-rostrados. Area axial
ancha. Estauro abriéndose levemente hacia el margen de la valva.
Estrías fuertemente radiales, punteadas, 17-18 en 10 u. Largo 100-
180 u; ancho 20-31 u.

El número de estrías es señalado por diversos autores como de
17-20 en 10 u, siendo esta una de las principales características de
este taxon.

Fue encontrada en la mayoría de los lugares muestreados,
pero esporádicamente durante el año: Río Andalién, Río Bío-Bío,
Laguna Pineda, Arroyo Leonera y Laguna La Posada.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

Género NAVICULA Bory

Clave para los taxa de Navicula.

1. Rafe generalmente en un engrosamiento silíceo de la pa-
red; nódulos terminales engrosados y expandidos lateral
mente; valvas lineares, suavemente ensanchadas al centro
¡IAN AAN (1) N. pupula var. rectangularis
Frústulosdeon. Otras: EFACIerÍSTICAS” tuinacniiamneneaaaes 2
Estrías! claramente! PUnteadas” a... banacito cameras 3
Estritis) no 1claraniente puUaTEAdAS laiot caciones 6
Puntos formando líneas transversales y longitudinales en
áicqulo. de. ii oO 4
Puntos forman solamente estrías transversales mn... 3
Estrías transversales más separadas al centro de la valva,
12-13 en 10 u, hacia los extremos más numerosas, 16-17
O ACTI A Sr Pa (3) N. cuspidata var. heribaud:
4. Estrías transversales igualmente distanciadas en toda la
vealva ¡nena nu. LOST SIA (2) N. cuspidata
5. Valvas elíptico-lanceoladas; extremos no producidos, re-
dnde ados... 20M..On,. SL E (4) N. mutica var. tropica
5. Valvas con los márgenes ondulados y extremos subcapi-
tadós crrosHadosiiicn. dic aiz don (5) N. mutica var. undulata
Estos lineas RETO. ORAL. LA O, 7
Estrías To lneadas "e A, 15
Extremos de las valvas hialinos, más silificados, no capi-
das. IO... IIA, Lo CREEN (6) N. capitata var. hungarica
Hxttremos' no! más*siilicados A AT to altiro: 8
Estrías irregularmente acortadas o alternativamente largas
y cortas en la parte media de la wvalvA cnccniicnncicnnccccaaomenns 9

POB (0 PTA

ER RA

—

8. Estrías regularmente acortadas en la parte media de la
USAS A O A A A 10

9. Area central con un punto aislado, estrías 16-20 en 10 u

rta Me dE cd IAN ASIA (7) N. decussis
9. Area central sin un punto aislado, estrías 14-15 en 10 u

E, ES, AA (8) N. salinarum var. intermedia

10:1* Extremos: rostradosto capitedos..¿Aaia. LS niaraa 11
10 Extremos truncados o redondeados. ...........ld..LL Is 13
11. Extremos suavemente capitados ............ (9) N. rhynchocephala
Lil. pExciremos, rostadosi:ia.al. sto dee abala. 12
12. Estrías radiales al centro de la valva y convergentes en
los ¿extremesparsL. sol... dls (11) N. viridula var. rostellata
12: Estrías radiales en toda la valva o algo paralelas en los
extremostbes0T. Leal... Xx (12) N. anglica var. subsalsa
13. “Rate y ¡dreO ¡emial derechos tim. ainda. la Roa 14
13. Maté y área "axtal! onduladas mar racnnnacciiccana (13) N. effrenata

14. Area central grande, orbicular, valvas lanceoladas ..............

des o SUE, ADAN (10) N. viridula var. avenacea
14. Area cal más lanceolada, valvas linear-lanceoladas ......

RE A ES RE ESTO (14) N. radiosa
15. Estrías 18-24 en 10 u, un punio aislado a un lado del area

TN YRACRA A (15) N. lateropunctata
15. Estrías más numerosas de 26 en 10 u, sin punto aislado
A TI A 16
16. Valvas lanceoladas con extremos rostrados o subrostrados;
estrías 28-32 en 10 u; área central pequena ..... (16) N. simula
16. «Valvas elípticas; estrías 26 en 10 u; área central dilatada
tausversalmentie mclaren atbribuainó (17) N. lapidosa

1. Navicula pupula Kutz. var. rectangularis (Greg.) Grunow
igual.

Grunow, A. in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet.-akad. Handl., 17(2): 45 (1880).

Valvas lineares, levemente ensanchadas en la parte media, con
extremos ampliamente redondeados. Area axial angosta; área cen-
tral dilatada transversalmente. Nódulos terminales muy notorios, mar-
cados por las últimas estrías que son más gruesas que las otras.
Estrías radiales, algo más paralelas hacia los extremos, en la parte
central más cortas y de largo irregular. Estrías 12-14 en 10 u en el
centro de la valva, más numerosos hacia los extremos, 21-22 en
10 u. Largo 31-48 u; transapical 8-10 u.

Fue encontrada esporádicamente durante el año en muestras
del río Andalién, Río Bío-Bío, Laguna Pineda y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Posa Chico en Patagonia
(Muller, 1909); Trípoli de Calama (Frenguelli, 1930); Trípoli en Isla
Cailín frente a Quellón, T. en Puyehue (Frenguelli, 1935); Lago Ri-

PEO > PAC

sopatrón (Krasske, 1939); Lago General Carrera, Cerca de Río Ru-
bens, A 100 km de Pta. Arenas, Al S.W. de Bahía Inútil, Lago Lynch,
Isla Dawson, Monte Tronador (Krasske, 1949); Bahía de Dichato
(Rivera, 1974).

2. Navicula cuspidata (Kutz.) Kutz. var. cuspidata
Pig...08

Kutzing, F.T., Bacill., p. 94, Lám. 3, fig. 24, 37 (1844).

Valvas lanceoladas con extremos claramente rostrados. Area
axial linear ,¡angosta; área central suavemente ensanchada, lanceo-
lada. Rafe derecha; extremos proximales curvados en la misma di-
rección. Estrías paralelas a levemente radiales, formadas de pun-
tos que forman líneas transversales y longitudinales. Estrías trans-
versales 15-18 en 10 u; líneas longitudinales 26-27 en 10 u. Largo
67-94 u; ancho 16-19 u.
| Taxon tolerante a un amplio rango de variaciones del medio,
siendo una de las especies de Navicula que mejor toleran la po-
lución orgánica.

Fue encontrada en muestras de verano y otoño del Río Anda-
lién, Río Bío-Bío, Laguna Pineda y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Posa Chico, Arroyo junto a
Laguna Blanca, Río Baguales y sus afluentes (Muller, 1909); Trípol:
de Calama (Frenguelli, 1930); Trípoli de Puyehue (Frenguelli, 1935);
Calbuco, Lago Risopatrón y sus afluentes, L. Puyehue (Krasske,
1939); Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948); Lago General Carrera,
Cerca de Río Rubens, Cabo Froward, Mallín Chileno (Krasske, 1949);
Santiago y alrededores (Negrete, 1964); Estero Lenga (Rivera en
Rivera et al., 1973).

3. Navicula cuspidata var. heribaudi Perag. «€ Herib.
Fa. "99

Peragallo 6 Heribaud, in Heribaud, Diat. Auvergne, p. 108, Lám. 4,
fig. 16 (1893).

Difiere de la variedad tipo principalmente por presentar ma-
yor separación entre las estrías del centro de la valva. Estrías del
centro de la valva 12-13 en 10 u, más numerosas hacia los extre-
mos, 16-17 en 10 u. Largo 82-106 u; ancho 16-17 u.

Bastante escasa en el material estudiado, solamente encontra-
da en muestras de invierno de la Laguna La Posada.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

er

4. Navicula mutica Kutz. var. tropica Hustedt
Fig. 60
Hustedt, F., Arch. Hydrobiol., Supl., 15(2): 233, Lám. 17, fig. 6 (1937).

Valvas elípticolanceoladas con extremos subredondeados. Area
axial más ancha hacia el centro de la valva; área central exten-
diéndose hacia los márgenes de la valva donde existen cortas es-
trías; un estigma presente a un lado del área central. Estrías no-
toriamente punteadas, radiales en toda la valva, 21-22 en 10 u. Lar-
go 27-29 u; ancho 8-8.5 u.

Presente sólo en algunas muestras del Río Bío-Bío; muy rara.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

5. Navicula mutica var. undulata (Hilse) Grunow

Fiar.6l
Grunow in Cleve 4 Grunow, Sv. Vetakad. Handl., 17(2): 41 (1880).

Valvas con los márgenes ondulados en mayor o menor grado,
y con extremos corrientemente sub-capitados o rostrados. Área axial
ensanchándose hacia el centro de la valva; área central dilatada
transversalmente no alcanzando los márgenes valvares o alcanzán-
dolo sólo a un lado; uno o varios puntos aislados presentes en el
área central .Extremos proximales de la rafe curvados en la misma
dirección. Estrías radiales, notoriamente punteadas, 16-17 en 10 u.
Largo 37-42 u; ancho 13-14 u.

Los escasos frústulos encontrados en el material de Concepción
concuerdan plenamente con las características de este taxon, a pe-
sar que el número de estrías y ondulaciones de los márgenes val-
vares es señalado, por diferentes autores, como un carácter un tan-
to variable.

Muy rara en el material estudiado, solamente encontrada en
una muestra de invierno del Río Andalién.

Distribución conocida para Chile: había sido señalada solamen-
te para el Monte Tronador (Krasske, 1949).

6. Navicula capitata Ehr. var. hungarica (Grun.) Ross
Fig. 62

Ross, R., Nail. Mus. Canada Bull., 97(2): 192 (1947).

Valvas linear-llanceoladas con extremos redondeados. Area axial
angosta; área central más o menos redondeada, pequeña. Estrías
lineadas, radiales al centro de la valva y convergentes en los ex-
tremos, 9-10 en 10 u. Largo 20-23 u; ancho 5-9.6 u.

Se diferencia de la variedad tipo por sus extremos no capita-
dos. Presente esporádicamente y en escasa cantidad en muestras
de verano y otoño recolectadas en el Río Andalién y Río Bío-Bío.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

BE

7. Navicula decussis Ostrup
Fig. 63

Ostrup, E., Danske Diat., p. 77, Lám. 2, fig. 50 (1910).

Valvas elíptico-lanceoladas con extremos capitados. Area axial
linear, muy angosta; área central irregular debido a las estrías cen-
trales que son más cortas e irregulares en longitud; un punto ais-
lado en el área central a un lado de la valva. Estrías lineadas, ra-
diales en el centro de la valva y levemente convergentes en los
extremos, 15-19 en 10 u. Largo 22-25 u; ancho 6-8 u.

Es muy característico para este taxon presentar estrías ondu-
ladas principalmente en la parte central de la valva.

Presente esporádicamente en muestras de verano y otoño re-
colectadas en el Río Andalién, Río Bío-Bío y Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: Lago Llanquihue (Krasske,
1939); Bahía de Coquimbo (Rivera, 1974).

8. Navicula salinarum Grun. var. intermedia (Grun.) Cleve
Fig. 64

Cleve, P.T., Sv. Vetakad. Handl., n.f., 27(3): 19 (1895).

Valvas lanceoladas con extremos subcapitados. Area axial an-
gosta, ensanchándose suavemente hacia el centro de la valva; área
central irregular debido a las estrías alternativamente largas y cor-
tas. Rafe filiforme. Estrías lineadas, radiales hacia el centro de la
valva y convergentes hacia los extremos, 14-15 en 10 u. Largo 30-
39 u; ancho 7-9 u.

Difiere de la variedad tipo principalmente por sus valvas más
angostamente lanceoladas y por su área central de menor tamaño.

En el material estudiado se la encontró durante casi todo el
año en muestras del Río Andalién y Río Bío-Bío, y esporádicamen-
te en muestras de la Laguna Lo Méndez.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

9. Navicula rhynchocephala Kutz. var. rhynchocephala
Pie: "Do

Kutzing, F.T., Bacill., p. 152, Lám. 30, fig. 35 (1844).

Valvas lanceoladas con extremos subcapitados a capitados.
Área axial linear, angosta; área central dilatada transversalmente,
más o menos redondeada; área axial y nódulo central muy sili-
ficados. Extremos proximales de la rafe suavemente curvados en
la misma dirección. Estrías lineadas, radiales hacia el centro de la
valva y suavemente convergentes hacia los extremos. Estrías 8-9
en 10 u en el centro de la valva y 11-12 en 10 u hacia los extre-
mos. Largo 48-55 u; ancho 10-11 u.

o

Bastante común en muestras del Arroyo Leonera y Laguna La
Posada, más esporádica en el Río Bío-Bío.

Distribución conocida para Chile: Río Tres Puentes en Pta. Are-
nas (Frenguelli, 1923); Trípoli de San Pedro de Atacama (Frengue-
1li, 1934); Calbuco, Lago Risopatrón, Afluente del Lago Risopatrón,
Lago Llanquihue (Krasske, 1939); Tierra del Fuego (Cleve-Euler,
1948); Al S.W. de Bahía Inútil, Mallín Chileno, A 100 km de Pta.
Arenas, Cerca de Río Rubens, Isla Dawson (Krasske, 1949); San-
tiago y alrededores (Negrete, 1964); Estero Lenga (Rivera en Rivera
et al., 1973).

10. Navicula viridula (Kutz.) Kutz. emend. V.H. var. avenacea
(Breb. ex Grun.) Van Heurck
Fig. 66

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belg., p. 84 (1885).

Valvas lanceoladas con extremos redondeados. Area axial an-
gosta, linear; área central orbicular o suborbicular. Extremos proxi-
males de la rafe levemente curvados en la misma dirección. Es-
trías lineadas, radiales hacia el centro de la valva y convergentes
hacia los extremos, 10-12 en 10 u, algo más numerosas en los ex-
tremos mismos.

Fue encontrada en todos los lugares estudiados (Río Andalién,
Río Bío-Bío, Laguna La Posada, Arroyo Leonera, Laguna Pineda y
Laguna Lo Méndez) pero particularmente abundante en el Arroyo
Leonera donde se presentó durante todo el año.

Distribución conocida para Chile: Posa Kark en Patagonia (Mu-
ller, 1909); Estero Lenga (Rivera en Rivera et al., 1973); Isla Santa
María (Rivera, 1974).

11. Navicula viridula var. rostellata (Kutz.) Cleve
Fig. 67

Cleve, P.T., Sv. Vetakad. Handl., n.f., 27(3): 15 (1895).

Valvas lineares a linear-lanceoladas con extremos subrostrados.
Area axial angosta, linear; área central más o menos redondeada,
algo irregular. Rate filiforme; extremos proximales derechos. Estrías
lineadas, radiales hacia el centro de la valva y convergentes hacia
los extremos, 11-14 en 10 u. Largo 38-43 u; ancho 9-10 u.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién, Ría
Bío-Bío, Arroyo Leonera y Laguna Lo Méndez.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

12. Navicula anglica Ralís var. subsalsa (Grun.) Cleve
Fig. 68

Cleve, P.T., Sv. Vetakad. Handl., n.f., 27(3): 22 (1895).

Valvas, lanceoladas con extremos rostrados a subcapitados.
Area axial angosta, linear; área central levemente ensanchada trans-
versalmente. Rafe derecha, delgada. Estrías lineadas, radiales en
la parte central, en los extremos suavemente radiales a paralelas.
Estrías 11 en 10 u. Largo 39-40.5 u; ancho 10-12.5 u.

Los escasos frústulos encontrados provienen de muestras de
verano recolectadas en la Laguna Pineda.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

13. Navicula effrenata Krasske
Fig. 69

Krasske, G., Ann. Acad. Sci. Fenn., Ser. A, Biologica, 4(14): 84, fig.
25-26 (1949).

Valvas linear-lanceoladas con extremos suavemente rostrados,
romo-redondeados. Area axial y rafe un tanto ondulados. Área axial
angosta, ensanchándose muy levemente hacia el centro de la val-
va; área central dilatada transversalmente, subcircular. Rafe muy
notoria; extremos proximales curvados en la misma dirección. Es-
trías lineadas, radiales en toda la valva, fuertemente curvada espe-
cialmente en la parte central de la valva. Estrías 10-11 en 10 u en
la parte central, 14-16 en 10 u hacia los extremos.

Según la descripción de Krasske (loc. cit.) el área central va-
ría desde circular a transversalmente rectangular. Los frústulos ob-
servados en el material de Concepción presentan una mayor cur-
vatura de las estrías.

Fue encontrada solamente en el Río Bío-Bío; rara.

Descrita por Krasske para la patagonia argentina no había si-
do aún señalada para territorio chileno.

14. Navicula radiosa Kutz. var. radiosa
Pg 7S

Kutzing, F.T., Bacill., p. 91, Lám. 4, fig. 23 (1844).

Valvas linear-lanceoladas con extremos agudo-redondeados.
Área axial angosta, linear; área central dilatada transversalmente,
más o menos redondeada y no alcanzando los márgenes de la val-
va. Área axial y nódulo central muy silificados. Rate derecha, li-
near a linear-llanceolada; extremos proximales suavemente curva-
dos en la misma dirección. Estrías lineadas, radiales hacia el cen-
tro de la valva y convergentes hacia los extremos, 10-12 en 10 u.
Largo 7485 u; ancho 10-12 u.

a

Taxon bastante común en muestras de la Laguna Pineda y La-
guna La Posada, esporádica en muestras del Río Andalién y Río
Bío-Bío.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de San Pedro de Ata-
cama (Frenguelli, 1934); Lago Puyehue, L. Rupanco, L. Llanquihue
(Krasske, 1939); Lago Laja, Laguna Chica de San Pedro (Rivera,
1970); Bahía de Concepción, Río Quenuir (Rivera, 1974).

15. Navicula lateropunctata Wallace
Fig. 70

Wallace, J., Not. Nat. Acad. Nat. Sci. Philadelphia, 331: 4, Lám. 2,
fig. 3 A-B (1960).

Valvas lanceoladas con extremos rostrados. Area axial muy
angosta; área central subredondeada, a un lado lleva un punto
aislado. Rafe filiforme; extremos distales curvados en distinta di-
rección. Estrías radiales en los extremos, algo más paralelas hacia
el centro de la valva. Estrías 18-19 en 10 u. Largo 21-26 u; ancho
6-7 u.

El ángulo que forman las estrías y el punto aislado en el área
central son características para esta especie.

Fue encontrada en muestras de verano y otoño recolectadas
en el Río Andalién, Río Bío-Bío, Arroyo Leonera y Laguna La Po-
sada.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

16. Navicula simula Patrick
El l

Patrick, R., Proc. Acad. Nat. Sci. Philadelphia, 111: 101, Lám. 8, fig.
8 (1959).

Valvas lanceoladas con extremos rostrados a subrostrados. Área
axial angosta, ensanchándose hacia el área central. Estrías radia-
les, 29-30 en 10 u; en la parte central hay una o dos cortas estrías
que le dan un aspecto irregular. Largo 11-14 u; ancho 3-4 u.

El único frústulo encontrado en el material de Concepción di-
fiere de la descripción de Patrick (loc. cit.) en que los extremos
valvares no son claramente rostrados sino subrostrados, y en que
en el área central existen a un lado 2 estrías más cortas, no una
sola como lo indica Patrick.

Presente en una muestra de verano recolectada en el Río Bío-
Bío.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

A

17. Navicula lapidosa Krasske
Fla....2

Krasske, G., Botan. Archiv., 27(3-4): 354, fig. 7 (1929).

Valvas elípticas. Area axial muy angosta, linear; área central
expandida lateralmente, rectangular o más ancha hacia el margen
valvar. Rafe filiforme, derecha. Estrías radiales, 26 en 10 u; en la
parte central son muy cortas y más o menos paralelas. Largo 16-19 u;
ancho 7 u.

Según la descripción de Krasske (loc. cit.) el área central es
rectangular. En el material estudiado se encontró que algunas ve-
ces esta área se ensancha hacia el margen de la valva, otras ve-
ces es casi rectangular.

Fue encontrada exclusivamente en el Arroyo Leonera durante
verano y otoño.

Distribución conocida para Chile: Afluente del Lago Risopatrón,
Calbuco (Krasske, 1939).

Género NEIDIUM Pflitzer

Clave para los taxa de Neidium.

ly ¡Estrías 224 24venul0 mveld.. (1) N. bisulcatum var. baicalense
TESIS. IMenoresua 20 ¿EN AO, Ue ecotipos Z

2. Valvas. trionduladas; y sextremos;¡atenuados. sitccnptinoediliaes
O o AS e Da a A lc E (2) N. magellanicum
Valvas no Mrorñdula das O. ia lo 3
Extremos claramente producidos, subrostrados a rostrados;
estrías 16-20 en LOA Aba diN (4) N. iridis var. ampliatum
Extremos no producidos, obtuso-redondeados; estrías 14-18
CO) UICUOTO. afelio e BOOT de (3) N. iridis

1. Neidium bisulcatum (Lagerst.) Cl. var baicalense
(Skv. 4 Meyer) Reimer
Fig. 74

Reimer, C., Proc. Acad. Nat. Sci. Philadelphia, 111: 18, Lám. 2,
fig. 2 (1959).

Se diferencia de la variedad tipo por su contorno valvar linear-
elíptico de lados un tanto convexos y por sus estrías más gruesas
y más separadas. Largo 40-44 u; ancho 10-12 u. Estrías 22-23 en
10 u. :

Escasos frústulos observados en muestras del Río Andalién y
Río Bío-Bío.
No había sido señalada anteriormente para Chile.

a

2. Neidium magellanicum Cleve var. magellanicum
Elo. WS
Cleve, P.T., Sv. Exped. Till Magellan., 3(7): 275, fig. 5 (1900).

Valvas alargadas, trionduladas, siendo las ondulaciones de los
extremos mayores que la ondulación central; extremos atenuado-
redondeados. Area axial angostándose hacia el área central y ha-
cia los extremos, en general angosta; área central elíptica, leve-
mente diagonal. Rafe derecha, angostándose hacia los extremos
proximales y distales. Estrías 13 en 10 u. Línea longitudinal pri-
maria submarginal. Largo 128 u; ancho 30 u.

Solamente la proporción largo-ancho de la valva es diferente
a la diagnosis de Cleve (loc. cit.), que la señala como de 7: 1.
Frenguelli (1924, p. 72, Lám. 7, fig. 1-2) muestra dos valvas de este
taxon, una de las cuales (fig. 2) tiene la proporción de 4: 1, es de-
cir, idéntica a la por nosotros encontrada.

Solamente encontrada en materia del Arroyo Leonera; muy
rara.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de San Pedro de Ata-
cama (Frenguelli, 1934); Calbuco, Isla Poluqui (Krasske, 1939); Tie-
rra del Fuego (Cleve-Euler, 1948).

3. Neidium iridis (Ehr.) Cleve var. 2ridis
Eigí M6
Cleve, P.T., Sv. Vet-akad. Handl., n. f., 26(2): 69 (1894):

Valvas linear-elípticas de lados suavemente convexos y extre-
mos obtuso-redondeados. Área axial angostándose hacia el centro
y hacia los extremos de la valva; área central diagonal-elíptica.
Rafe derecha, más angosta hacia los extremos proximales y dista-
les; extremos proximales curvados en distinta dirección. Línea lon-
gitudinal primaria submarginal; 2-4 líneas secundarias presentes.
Estrías punteadas, radiales u oblicuas en la parte media de la val-
va, convergentes hacia los extremos. Estrías 15-16 en 10 u. Largo
90-93 u; ancho 16-18 u.

Presente solamente en el Río Andalién durante el otoño; rara.

Distribución conocida para Chile: Puyuhuapi, Calbuco, Río Pas-
cua (Krasske, 1939).

4. Neidium iridis var. ampliatum (Ehr.) Cleve
EA li
Cleve, P.T., Sv. Vetakad. Hanal., n.f., 26(2): 69 (1894).

Se diferencia de la variedad tipo por presentar extremos an-
chos, claramente producidos, subrostrados a rostrados. El resto de
las características son semejantes a las de la variedad ¿ridis. Es-
trías 19-20 en 10 u. Largo 67-70 u; ancho 17-18 u.

— ¿qué

Variedad más común en lagos y posas que en arroyos. Fue

encontrada en muestras de verano recolectadas en la Laguna Pi-
neda.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

Género PINNULARIA Ehrenberg

Clave para los taxa de Pinnularia.

1.

0 DI

Qe

E

DOLIDO

hs
pun
,

HH hit
DOjE=

hh
wm NN

Estrías cortas; área axial y central dejando un amplio es-
pacio en el centro de la valva

Gonzolras. características. 02d... QRO DOn. GU. ADRMO 1 6
Valvas ensanchadas en la parte media mnnaoocacecccanconenacesneos 3
Valvas lineares a linear-lanceoladas .cccnco.ccccccconnocoroecosirmes -
Area central y axial granular; estrías paralelas o suave-

fhenie, Tadialesnd cet. lolo. cla ol az (1) P. acrosphaeria
Area central y axial no granulares pero el área central
lleva 4 marcas reniformes; estrías radiales al centro y con-
vergentes en los extremoS ennnccaacacionanono (2) P. pinedana sp. nova
Valvas lanceoladas o linear-lanceoladas llevando 4 marcas
reniformes en el área central

IA TESSA (3) P. pinedana var. attenuata var nova
Valvas lineares sin marcas en el área central mum... 9
Extremos claramente producidos, rostrado-rredondeados .........
JUL... (4) P. brevicostata var. intermedia f. cuneata f. nova
Extremos no producidos, redondeados ennncaccncoconanonncemmneremmemms
ALA DE 216 O (5) P. brevicostata var. sumatrana
Estrías anchas, distantes entre SÍ mnnccccccnacanenecicnss (6) P. borealis
Estrías angostas, no muy separadas entre SÍ mnmcnccccccanans y
Estrías cruzadas por líneas longitudinales ...ccciccancccccconos 8
Estrías no cruzadas por líneas longitudinales ocnnnnccccnccn. 15
EE, CO A e 9
E A ALT 11
Valvas ensanchadas en la parte Media maniaco. (9) P. nobilis
Valvas no ensanchadas en la parte media enaoonooococaccananans 10
Area axial 1/5 del ancho de la valva mncocancaccaan (7) P. viridis
Área axial 1/3 del ancho de la valva mmccococceconanconemensirensonescssnes
O NN O TAN (8) P. viridis var. intermedia
Valvas ensanchadas en la parte Media cncnccnccoccnocanoneseneneceos
e ía (11) P. major var. transversa

Valvas no ensanchadas en la parte media
Estrias 12-14 en 10.1 .....i Li) IAS ZA ca Ll da

pap A, pto (12) P. tropica var. densestriata var. nova
Estrías inferiores a 8 en 10-u ... ¿er oca Lil 8

Valvas levemente contraídas en la parte media; extremos
enSsanchados eccnacacacononanmocc (14) P. latevittata í. medioconstricta

y

13. Valvas no contraídas en la parte medial mncncaaccccocccacccinancanonns 14

14. Estrías 46 en 10 u; valvas anchamente lineares encccicconicicccnns
E dd da A e A TN de (13) P. dactylus

14. Estrías 7-8 en 10 u; valvas angostamente lineares emmnancccacacns
IA ROS, a a Lc, El (10) P. major var. linearis

15. Valvas con extremos claramente capitados; largo no ma-
yoride" 75 deL EEE SAA A TO 16

15. Valvas con extremos no capitados; gran tamaño e.co.aa.... 18

16. Area axial, entre el nódulo central y los extremos, alre-
dedor de. 1/4 del. ancho: de la wvalva.2aticii a.
A A AGO. 220 (17) P. braunúi var. amphicephala

16. Area axial más angosta, alrededor de 1/5 o menos del

amecho- de lar” valvibora mts UNA. RECAM 17
17" Relación largo:oncho iio aorta emos (15) P. termitina
17: Relación largormcho;/ 3 lo --d310 04. IB de (16) P. biceps
18. Extremos terminales de la rafe del tipo “bayoneta” ...... 19

18. Extremos terminales del tipo "signo de interrogación” .. 20
19. Engrosamiento silíceo redondeado presente a cada lado

de la valva en el área central cnicn..occcaacccaacanoons (21) P. divergens
19. Area central sin engrosamientos silíceos; márgenes val-
vares levemente ondulados ....ccao..ccooa. (18) P. substomatophora

20...-Mérgenes yde yla maluan ondulados. |... noc
A A. E (23) P. abaujensis var. subundulata

20. Márgenes de la valva no ondulados encanconnnococcnnonnomenesmecens 21
Zi: Valvas: lineores vila (22) P. abaujensis var. linearis
21. Valvas hineoreliphicashruetehas... acia OL. AQUA 22
22 EPICA) LEDO un ista. ALO cocer (19) P. brebissonú
DR EJA Orca 2033 Y cenatias (20) P. brebissonti var. diminuta

1. Pinnularia acrosphaeria W. Sm. var. acrosphaeria
Fig. 78

Smith, W. Syn. British Diat., 1: 58, Lám. 19, fig. 183 (1853).

Valvas lineares, suavemente ensanchadas en la parte central y
en los extremos que son redondeados. Area axial ancha, 1/3 del
ancho de la valva, cubierta de toscas granulaciones y, por lo
general, ensanchándose paulatinamente hacia la parte central de
la valva; área central no diferenciada. Rafe derecha angostándo-
se hacia los extremos proximales y distales; extremos proximales
levemente curvados en la misma dirección; extremos distales níti-
dos y grandes. Estrías 11-12 en 10 u, paralelas o levemente ra-
diales. Largo 50-65 u; ancho 9-13 u.

Presente esporádicamente en muestras recolectadas en el Río
Andalién y Laguna Pineda.

Distribución conocida para Chile: Posa Chico en Patagonia
(Muller, 1909); Río Tres Puentes en Pta. Arenas (Frenguelli, 1923);

E

Trípoli en Isla de Chiloé (Frenguelli, 1930); Trípoli en Puyehue, T.
en Isla Cailín (Frenguelli, 1935); Calbuco, Lago Risopatrón, Afluente
del Lago Risopatrón, Termas de Puyehue, Lago Rupanco, Lago
Llanquihue, Río Puelo (Krasske, 1939); Isla Dawson, San Isidro en
Cabo Troward, Al S.W. de Bahía Inútil, Lago Linch, L. General Ca-
rrera, A 100 km de Pta. Arenas, A 10 km de Río Rubens, Río Alerce,
Mallín Chileno, Monte Tronador (Krasske, 1949).

2. Pinnularia pinedana sp. nova
Fig. 79-80

Valvae anguste, in medio et in apicibus dilatatae; apicibus
truncato-rotundis. Área axialis lata, aequalis dimidio lati-
tudinis valvarum; area centralis tangens in ambobus late-
ribus mcarginem, cum 4 maculis reniformis. Rapha recta;
apicibus proximalibus eodem cursu declinatis. Striis centra-
libus radiatis, convergentibus in apicibus, in medio absenti-
bus; cum linea longitudinali submarginali. Striis 8-10 in
10 u. Longitudo 140-170 u. Latitudo 16-20 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Laguna Pinedo.
DIAT-CONC 720, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas angostas, ensanchadas en la parte media y en menor
grado en los extremos que son anchamente redondeados, un poco
truncado-redondeados. Área axial nítida, generalmente de la mitad
del ancho de la valva, paralela a los márgenes de la valva salvo
en los extremos donde se enangosta bruscamente; el área axial se
ensancha en una gran área central que alcanza siempre los már-
genes de la valva; cuatro marcas oscuras de aspecto reniforme
siempre presentes en el área central. Rafe derecha; extremos proxi-
males suavemente curvados en la misma dirección; extremos dista-
les nítidos y grandes; algunas veces la rafe se ensancha cerca de
los extremos terminales en una especie de nódulo. Nódulos polares
grandes, subcirculares. Estrías radiales hacia el centro de la valva,
convergentes en los extremos, ausentes en la parte central de la
valva; estrías cruzadas por una línea longitudinal submarginal.
Estrías 8-10 en 10 u. Largo 140-170 u; ancho 16-20 u.

Esta especie se caracteriza por la forma de la valva, las mar-
cas reniformes del área central, la línea longitudinal submarginal
y la presencia o ausencia de la dilatación de la rafe cerca de los
extremos distales.

En los numerosos ejemplares estudiados, las marcas reniformes
del área central siempre estuvieron presentes. Esta es una carac-
terística atribuida generalmente al grupo Divergentes, pero se ve

== 59

que es posible que también aparezcan en otros grupos de Pinnu-
laria.

Los extremos de las valvas son generalmente diferentes entre
sí, siendo uno levemente más truncado que el otro. Un carácter
variable de este taxon es la presencia o no de una dilatación de
la rafe cerca de sus extremos distales. Aproximadamente la mitad
de la población estudiada poseía esta característica. Esta dilata-
ción de la rate ya ha sido señalada para el género Pinnularia y
así Hustedt (1965, fig. 30) la indica para P. elongatoides tf. linearis.

Pinnularia pinedana sp. nova se asemeja a P. boyeri Patrick
pero la mayor inclinación de las estrías en los extremos de las
valvas, la forma de éstos y la presencia de las 4 marcas renifor-
mes del área central la alejan de ella. Es también cercana a P.
gibba var. hyalina Hustedt por el número de estrías y la forma
de las áreas axial y central, pero se diferencia de ella por las
marcas del área central, la forma de los extremos valvares, la
línea longitudinal submarginal y su área axial más ancha. De P.
clericí var. correntina Freng. se diferencia por la forma de los
extremos valvares, el número de estrías, las marcas del área cen-
tral y por características de la rafe. De P. elongatoides Hustedt se
diferencia por la forma de los extremos valvares, por la línea lon-
gitudinal submarginal (no dos como en el taxon de Hustedt), por
el número de estrías, forma del área central y la presencia de las
marcas en ella. De P. stauroptera Rabh. y sus variedades y for-
mas se diferencia por la línea longitudinal submarginal, las marcas
del área central y por la forma de los extremos valvares.

Taxon muy común y abundante en la Laguna Pineda presente
durante todo el año. Se la encontró también en el Río Andalién,
pero escasa y esporádicamente.

3. Pinnularia pinedana sp. nova var. atitenuata var. nova
Fig181

Diferens varietate pinedana per conspectum valvarum li-
nearum-lanceolatarum, apicibus attenuatis-subrotundatis; per
conspectum areae axialis latae versus medium et per mi-
norem longitudinem valvarum. Longitudo 80-100 u. Latitu-
do 12-14 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile. Provincia de Concepción, Río Andalién.
DIAT-CONC 708, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas linear-lanceoladas disminuyendo paulatinamente hacia
los extremos que son levemente ensanchados, atenuado-subredon-
deados. Area axial nítida, ensanchándose hacia el centro de la val-
va donde se abre en una gran área central que alcanza los már-

laa Ei

genes de la valva; área central con 4 notorias marcas de aspecto
reniforme. Rafe derecha; extremos proximales levemente curvados
en la misma dirección; extremos distales grandes y nítidos. Estrías
radiales hacia el centro de la valva, convergentes en los extremos,
ausentes en la parte central de la valva; estrías cruzadas por una
línea longitudinal submarginal. Estrías 8-10 en 10 u. Largo 80-100 u;
ancho 12-14 u.

Se diferencia de la variedad tipo por la forma de la valva y
sus extremos, por la forma del área axial y por su menor tamaño.
En el material estudiado no se observó la dilatación de la rafe,
cerca de los extremos distales, como sucede en muchas células
de la variedad tipo.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién y en
la Laguna Pineda.

4. Pinnularia brevicostata Cl var. intermedia Manguin f.
cuneata f nova
Fi 82

Diferens varietate ¿mtermediía per apices valvarum cuneato-
rostratos. Striis 9-10 in 10 u. Longitudo 56-57 u. Latitudo 9-
AA

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Laguna Pineda.
DIAT-CONC 720, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas lineares con extremos claramente producidos, cuneado-
redondeados. Area axial ancha, dilatándose paulatinamente hacia
el área central; área central dilatada transversalmente y alcanzan-
do los márgenes de la valva. Rafe derecha, angostándose hacia los
extremos proximales y distales; extremos proximales curvados en
la misma dirección, extremos distales nítidos. Estrías 9-10 en 10 u,
radiales hacia el centro de la valva y convergentes en los extremos;
estrías cruzadas por una linea longitudinal submarginal. Largo 56-
67 u; ancho 9-11 u.

Difiere de la variedad intermedia por la forma de los extre-
mos valvares que son claramente producidos, cuneados, rostrados.

Presente exclusivamente en la Laguna Pineda durante los me-
ses de verano y otoño.

5. Pinnularia brevicostata var. sumatrana Hustedt
Fig. ¿03

Hustedt, F., in Schmidt, Atlas, Lám. 389, fig. 7-9 (1934).

Se diferencia de la variedad tipo por sus valvas anchamente
lineares. Relación Largo: ancho, 5:1. Estrías 9 en 10 u, paralelas o

o A

levemente radiales al centro de la valva y paralelas o levemente
convergentes en los extremos, no ausentes en la parte media de la
valva. Largo 63-66 u; ancho 13-14 u.

Presente exclusivamente en la Laguna Pineda durante el ve-
Tano.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

6. Pinnularia borealis Ehr. var. borealis
Fig. 87

Ehrenberg, C. G., Abh. Akad. Berlin Physik, 1841, p. 420, Lám. 1(2),
fig. 6; Lám. 4(1), fig. 5; Lám. 4(5), fig. 4 (1843).

Valvas anchamente lineares con extremos redondeados. Area
axial 1/4 a 1/5 del ancho de la valva; área central suavemente
dilatada transversalmente, redondeada. Rafe levemente curvada, un
tanto excéntrica hacia el centro de la valva; extremos proximales
levemente curvados en la misma dirección; extremos distales níti-
dos. Estrías anchas, 5-6 en 10 u, más o menos paralelas pero a ve-
ces algo radiales en el centro de la valva y suavemente conver-
gentes en los extremos. Largo 31-36 u; ancho 7-9 u.

En el material estudiado se notó una variación del área cen-
tral y axial de este taxon. Algunas veces el área axial es bastante
angosta y el área central muy clara y redondeada; otras veces el
área axial es más ancha y el área central es muy poco dilatada
transversalmente.

Pinnularia borealis se presentó esporádicamente en muestras
recolectadas en el Río Andalién, Río Bío-Bío, Arroyo Leonera y La-
guna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Termas de Puyehue, Lago
Llanquihue, Calbuco, Río Pascua (Krasske, 1939); Bahía de Concep-
ción (Rivera, 1969). La localidad tipo de este taxon descrito para
Chile es incierta.

7. Pinnularia viridis (Nitz.) Ehr. var. viridis
Fig. 84

Erhenberg, C. G., Abh. Akad. Berlin Physik, 1841, p. 305, 385, Lám.
1(1), fig. 7; Lám. 1(3), fig. 3; Lám. 1(4), fig. 3; Lám. 2(1), fig. 22; Lám.
2(3), fig. 1; Lám. 2(5), fig. 2; Lám. 2(6), fig. 21; :Lám. 3(1),. fig. 12
(1843).

Valvas lineares con extremos más angostos, redondeados. Area
axial más o menos angosta, 1/5 del ancho de la valva, más an-
gosta hacia los extremos valvares; área central pequeña y más o
menos redondeada. Rafe compleja; extremos proximales levemente
curvados en la misma dirección; extremos terminales nítidos. Estrías
por lo general paralelas, suavemente radiales en el centro de la

a

valva y suavemente convergentes en los extremos, cruzadas por
una nítida cinta longitudinal. Estrías 6 en 10 u. Largo 160-170 u;
ancho 26-29 u.

Solamente presente en muestras de verano recolectadas en la
Laguna Pineda y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange en Cabo de
Hornos (Petit, 1889); Río Grande (Cleve, 1900); Posa Kark, Posa
Chico, Arroyo junto a Laguna Blanca (Muller, 1909); Provincia de
Santiago (Espinosa, 1923 y Negrete, 1964); Trípoli a 2 km de Cho-
rrillos (Frenguelli, 1929); Trípoli de Calama (Frenguelli, 1930); Trí-
poli de San Pedro de Atacama (Frenguelli, 1934); Trípoli de Puye-
hue, T. en Isla Cailín (Frenguelli, 1935); Calbuco, Puyuhuapi, Isla
Poluqui, Lago Risopatrón, Termas de Puyehue, Lago Rupanco (Kras-
ske, 1939); Monte Tronador, Río Alerce, Mallín Chileno, Río Rubens,
Lago General Carrera, Lago Lynch, Al S.W. de Bahía Inútil, San
Francisco al norte de Pta. Arenas, Lago O'Higgins, Isla Dawson
(Krasske, 1949).

8. Pinnularia viridis var. intermedia Cleve
PI “89
Cleve, .P.T., ¿Actas Soc. Fauna Fl. Fenn., 8(2): 22 (1891)

Se diferencia de la variedad tipo por presentar un área axial
más ancha (1/3 a 1/4 del ancho de la valva) y por sus estrías le-
vemente más numerosas, 8-9 en 10 u, cruzadas por una nítida cin-
ta longitudinal. Largo 115-125 u; ancho 17-18 u.

Presente exclusivamente en la Laguna Pineda durante el ve-
rano y otoño.

Distribución conocida para Chile: Arroyo junto a Laguna Blan-
ca en Patagonia; Río Tres Pasos (Muller, 1909); Trípoli de Arica
(Frenguelli, 1938).

9. Pinmularía nobilis Ehr. var. nobilis
Señalada para la Bahía de Concepción por Rivera, 1969.

10. Pinnularia major (Kutz.) Rabh. var. linearis Cleve
Fig. 86

Cleve, P.T., Sv. Vet-akad., Handl. n.f., 27(3): 89 (1895).

Difiere de la variedad tipo por su contorno valvar linear, no
ensanchado en el centro, con extremos redondeados. Area axial
angosta; área central levemente dilatada, redondeada. Rafe como
en la variedad tipo, simple. Estrías levemente radiales en el centro
de la valva y levemente convergentes en los extremos, cruzadas por
una angosta cinta longitudinal. Estrías 7-8 en 10 u. Largo 125-230 u;
transapical 23-30 u.

e

Presente en la mayoría de los lugares estudiados pero espo-
rádicamente durante el año y en escasa cantidad: Río Andalién,
Río Bío-Bío, Laguna Pineda, Arroyo Leonera y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Río Grande (Cleve, 1900);
Trípoli a 2 km de Chorrillos (Frenguelli, 1929); Trípoli en Puyehue
(Frenguelli, 1935); Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948).

11. Pinnularia major var. transversa (A.S.) Cleve
Señalada para la Laguna Chica de San Pedro por Rivera, 1970.

12. Pinnularia tropica Hust. var. densestriata var. nova
Fig. 88

Striae crassiores varietate tropica, 12-14 in 10 u. Longitudo

97-65 u. Latitudo 10-12 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Arroyo Leonera.
DIAT-CONC 681, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, 'TYPUS.

Se diferencia de la variedad tipo por el mayor número de es-
trías, 12-14 en 10 u., coincidiendo el resto de las características con
el taxon de Hustedt. Largo 57-65 u; ancho 10:12 u.

Difiere de la variedad subtropica Cholnoky (1957) por la for-
ma de los extremos valvares y por la continuidad de las estrías
en la parte central de la valva.

Presente exclusivamente en el Arroyo Leonera, esporádica du-
rante el año.

13. Pinnularia dactylus Ehr. var. dactylus
Fig. 90

Ehrenberg, C.G., Abh. Akad. Berlin Physik, 1841, p. 420, Lám. 4(1),
fig. 3 (1843).

Valvas anchamente lineares con extremos redondeados. Area
axial nítida, 1/4 del ancho de la valva, ensanchándose suavemen-
te en el área central que es subredondeada. Rafe simple, un tanto
ondulado; extremos proximales levemente curvados en la misma
dirección; extremos terminales nítidos. Estrías suavemente radiales
en el centro de la valva y suavemente convergentes en los extre-
mos, cruzadas por una ancha cinta longitudinal. Estrías 5-6 en 10 u.
Largo 210-260 u; ancho 30-35 u.

Taxon generalmente presente en aguas con bajo contenido mi-
neral. Fue encontrada en el Río Andalién y en la Laguna Pineda,
esporádicamente en las muestras de verano y otoño.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange en Cabo de
Hornos (Petit, 1889); Río Cullen (Cleve, 1900); Trípoli de Calama
(Frenguelli, 1930); Trípoli de San Pedro de Atacama (Frenguelli,

Pee E

1934); Trípoli en Isla Cailín (Frenguelli, 1935); Tierra del Fuego
(Cleve-Euler, 1948); Lago Riñihue (Thomasson, 1955).

14. Pinnularia latevittata Cl. f medioconstricta (Font.)
Cleve-Euler

Fue señalada para la Laguna Chica de San Pedro por Rivera,

1970.

15. Pinnularia termitina (Ehr.) Patrick var. termitina
Fig. 91

Patrick, R. in Patrick 4 Reimer, Monogr. Acad. Nat. Sci., Phila., 13:
995, Lám. 55, fig. 6 (1966).

Valvas lineares, angostas, extremos claramente capitados. Area
axial angosta, ensanchándose paulatinamente hacia el área cen-
tral; área central dilatada transversalmente. Rafe angosta; extremos
proximales levemente curvados en la misma dirección; extremos ter-
minales nítidos; nódulos terminales grandes y notorios. Estrías 11-
12 en 10 u, radiales al centro de la valva y convergentes en los
extremos. Largo 40-44 u; ancho 4-5 u. Relación largo:ancho, 8:1.

Bastante rara en el material estudiado, esporádica en muestras
del Río Andalién y de la Laguna Pineda.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

16. Pinnularia biceps Greg. var. biceps
Figo 92

Gregory, W., Quart. Jour. Micr. Sci., 4:8, Lám. 1, fig. 28 (1856).

Valvas lineares con extremos notoriamente capitados. Área axial
nítida, ensanchándose hacia el área central; área central dilatada
transversalmente alcanzando los márgenes valvares. Rafe derecha,
delgada; extremos proximales levemente curvados en la misma di-
rección; extremos distales nítidos; nódulos polares grandes. Estrías
radiales al centro y convergentes en los extremos, 10-11 en 10 u.
Largo 40-62 u; ancho 9-12 u. Relación largo:ancho, 5:1.

Taxon de aguas dulces con bajo contenido mineral. Presente
esporádicamente durante el año en el Río Bío-Bío y Arroyo Leo-
nera.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

17. Pinnularia braun (Cl) Gr. var. amphicephala (Mayer)
Hustedt

Fue señalada para la Bahía de Concepción por Rivera, 1969.

POS - . Pen

18. Pinnularia substomatophora Hust. var. substomatophora
Fig. 93

Hustedt, F., in Schmidt, Atlas, Lám. 392, fig. 14 (1934).

Valvas lineares con los lados suavemente ondulados y extre-
mos -redondeados. Área axial se ensancha suave y paulatinamente
hacia el área central; área central dilatada trnsversalmente alcan-
zando los márgenes de la valva. Rafe delgada angostándose hacia
los extremos proximales y distales; extremos proximales derechos;
extremos distales del tipo “bayoneta”; nódulos terminales de regular
tamaño, nítidos. Estrías 10-12 en 10 u, radiales al centro de la valva
y fuertemente convergentes en los extremos. Largo 65-72 u; ancho
9-10 u.

Taxon más o menos común en el material estudiado, especial-
mente en las muestras de la Laguna Pineda donde se la encontró
durante todo el año; más rara en material de la Laguna La Posada.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

19. Pinnularia brebissoni (Kutz.) Rabh. var. brebissonil
Fue señalada para la Bahía de Concepción por Rivera, 1969.

20. Pinnularia brebissoníi var. diminuta (Grun.) Cleve
Fig. 89

Cleve, P.T., Sv. Vet.-akad. Handl., n.f., 27(3): 78 (1895).

Valvas linear-lanceoladas con extremos redondeados. Área axial
amgosta, ensanchándose hacia el área central; área central dilata-
da transversalmente y alcanzando los márgenes de la valva. Rafe
derecha, filiforme; extremos proximales levemente curvados en la
misma dirección; extremos distales nítidos; nódulos polares peque-
ños. Estrías 12-13 en 10 u, radiales en el centro de la valva y con-
vergentes en los extremos. Largo 24-32 u; ancho 5.5-6.5 u.

Bastante escasa en el material estudiado, esporádica en mues-
tras del Río Andalién, Laguna Pineda, Arroyo Leonera y Laguna
La Posada.

Distribución conocida para Chile: Río Baguales y sus afluentes,
Arroyo junto a Laguna Blanca (Muller, 1909).

21. Pinnularia divergens W.Sm. var. divergens

Fue señalada para la Laguna Chica de San Pedro por Rivera,
1970, y para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al., 1973.

22. Pinnularia abaujensis (Pant.) Ross var. linearis
(Hust.) Patrick

Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,
1973. :

e A

23. Pinnularia abaujensis var. subundulata
(Mayer ex Hust.) Patrick

Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,

1973.

Familia CYMBELLACEAE
Género AMPHORA Ehrenberg

1. Amphora splendida sp. nova
Fig. 9

Valvae lanceolatae, asymetricae; marginibus dorsalibus val
de convexis, marginibus ventralibus leniter convexis. Ex-
tremitates valvarum protractae, asymetrice capitatae, latera
ventralia declinata. Area axialis perangusta in latere dorsali,
in latere ventrali lata, lanceolata; area centralis solum in
latere dorsali indicata striis brevioribus. Rapha filamentosa,
recta in parte media, in parte terminali ventraliter curvata.
Striae dorsales punctatae, ad centrum valvae parallelae et
breviores, ad extremitates radiatae, 1921 in 10 u. Striae
ventrales brevissimae, unipuctatae, 24 in 10 u, in parte me-
dia absentes. Longitudo 26-27 u. Latitudo 5-6 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Río Andalién.
DIAT-CONC 702, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas lanceoladas, asimétricas; margen dorsal fuertemente con-
vexo, margen ventral suavemente convexo. Extremos valvares clara-
mente producidos, asimétricamente capitados, inclinados hacia el la-
do ventral. Area axial muy angosta hacia el lado dorsal, en el lado
ventral es grande, lanceolada; área central expandida hacia el la-
do dorsal debido al acortamiento de las estrías de esa parte. Rafe
filamentosa, recta en su parte media y curvada hacia el lado ven-
tral en los extremos. Estrías dorsales claramente punteadas, para-
lelas en la parte media de la valva donde hay 2 estrías más cortas,
y radiales hacia los extremos, 19-21 en 10 u. Estrías ventrales muy
cortas, unipucteadas, 24 en 10 u, ausentes en la parte media de la
valva. Largo 26-27 u; ancho 5-6 u.

Amphora splendida sp. nova es cercana, por su morfología, a
A. pseudomontana (Cholnoky, 1960, Nova Hedw., 2(1-2):25, Lám. 1,
fig. 66) que no tiene tipo designado. Se diferencia de ella por el
menor número de estrías en el lado ventral de la valva, porque
éstas faltan en la mitad del lado ventral y por el menor tamaño
de las valvas.

Stoll

Fue encontrada en muestras de verano y otoño recolectadas en

el Río Andalién y Río Bío-Bío.

Género CYMBELLA LAgardh

Clave para los taxa de Cymbella.

l:
1

y

Extremos terminales de la rafe curvados hacia el lado

ventral cea Ca ML. EL. AE COAMEIE A CORONADA 2
Extremos terminales de la rafe curvados hacia el lado
dorsalaicias. LL A. MONO - JACUOS WITT IAS LAA 4
Nódulos polares muy cerca de los extremos de la valva
plaroeade em Nas Mer TA ERROS. 00 (1) C. ventricosa
Nódulos polares alejados de los extremos econo 3
Formas. anchas» estrías 8-10 en 1QUu ii (2), prostrata
Formas angostas, estrías 10-14 en 10 U eonnccnnacccccn (3) C. gracilis
Valvas lineares, pequeñas, gibosas en la parte media del
lada ventral aL A (4) C. sinuata
Walvas: "COM “OLas COrACISnSACAS tao
Valvas paco” ASIMEICas e oa ca 6
WValvas. mayormente, AsiMéHICAS a tt 7
Extremos capitados; estrias radiales en toda la valva .........
¡os simeagiá roo, "Pote muak Wespegilero, dedo jo lr (5) C. naviculiformis

Extremos no capitados; estrías radiales al centro de la val-
va y convergentes en los extremos

A a (6) C. haucktt var. chilensis var. nova
Lado ventral recto o levemente CONVeXO encinas (7) C. affinis
Ledddyuwventralinúspo menos CÓRnCa VO ds 8
Area central lleva un estigma alargado ...cocccocoacocmnesnmes 9
Areameentralosintestigmer alargado mc oo OEA 11
Extremosuclaramentenrostradas ita a a 10
Extremos no claramente rostrados; valvas de 91-97 u de
arar trab da ada (9) C. tumida f. major
Extrenios «truncado-redondeados idioma (8) C. tumida

Extremos truncado-oblicuos ...... (10) C. tumida var. australica

í. rostrata Íf. nova
Area central con un punto aislado; rafe compleja

a a od. AOL. (11) C. eymbiformis
Area central sin punio aislado; rafe filiforMe .ccccincccccinicnnnonss
as O AE ADO A Al: (12) C. lanceolata

1. Cymbella ventricosa Kutz. var. ventricosa
AE

Kutzing, F.T., Kiesel. Bacill. O. Diat., p. 80, Lám. 6, fig. 16 (1844).

Valvas un tanto elípticas con el lado dorsal fuertemente con-

E ALO

vexo y el lado ventral más o menos recto a suavemente convexo;
extremos nítidos, redondeados, dirigidos hacia el lado ventral. Area
axial angosta; área central suavemente producida, algo redondea-
da. Rate derecha, delgada; extremos proximales levemente curva-
dos hacia el lado dorsal; rafe situada más cerca del lado ventral
de la valva. Estrías radiales, finamente punteadas, en la parte ven-
tral son algo convergentes hacia los polos. Estrías 12-13 en 10 u
al centro de la valva, más numerosas hacia los extremos. Largo
18-25 u; ancho 6-9 u.

Taxon de amplia distribución, indicadora de desperdicios in-
dustriales de cobre y ácido sulfhídrico. Bastante común en el Río
Andalién, Río Bío-Bío y Laguna Lo Méndez donde se presentó du-
rante casi todo el año.

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange en Cabo de
Hornos (Petit, 1889); Posa Kark en Patagonia (Muller, 1909); Trípoli
de Calama, Trípoli en Isla de Chiloé (Frenguelli, 1930); Trípoli de
San Pedro de Atacama (Frenguelli, 1934); Trípoli en Isla Cailín
(Frenguelli, 1935); Bahía de Dichato, B. de Coliumo, Calbuco, Río
Puelo, Puyuhuapi, Río Pascua, Lago Risopatrón, Afluente del Lago
Risopatrón, Ventisquero Yacaf, San Vicente, Termas de Puyehue,
Lago Rupanco, L. Llanquihue, Fiordo de Reloncaví (Krasske, 1939);
Lago Lynch, Cabo Froward. Al S.W. de Bahía Inútil, A 100 km. de
Punta Arenas, L. O'Higgins, Río Rubens; Lago General Carrera; Río
Alerce; Monte Tronador, Mallin Chileno (Krasske, 1949); Santiago
y alrededores (Negrete, 1964); Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al.,
1973); Bahía de Coquimbo, Isla Santa María, Golío de Quetalma-
hue (Rivera, 1974).

2. Cymbella prostrata (Berk.) Cleve var. prostrata
Fig. 96

Cleve, P.T., Sv. Vet.«akad. Hanal., n.f., 26(2): 167 (1894).

Valvas asimétricas, semielípticas, lado dorsal fuertemente con-
vexo y lado ventral más recto, convexo en la parte media; extremos
amplios, obtuso-rredondeados, inclinados hacia el lado ventral. Area
axial angosta; área central redondeada. Estrías lineadas, en la par-
te media generalmente irregulares en largo, radiales al centro y
convergentes en los extremos, 8 en 10 u. Largo 61 u; ancho 22 u.

Muy rara en el material estudiado, un solo frústulo encontrado
en material del Río Bío-Bío.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Valparaíso (Krasske,
1941); Santiago y alrededores (Negrete, 1964).

qe

3. Cymbella gracilis (Rabh.) Cleve var. gracilis
Fig. 98

Cleve, P.T., Sv. Vet-akad. Handl., n.f., 26(2): 169 (1894).

Valvas largas y angostas con el lado dorsal convexo y lado
ventral más recto, un tanto ensanchado en la parte media; extre-
mos agudo-redondeados, algo curvados hacia el lado ventral. Area
axial angosta; área central levemente ensanchada; un estigma pre-
sente. Rafe derecha, delgada, más próxima al lado ventral de la
valva; nódulos terminales a cierta distancia de los extremos; ex-
tremos proximales curvados hacia el lado dorsal. Estrías punteadas,
paralelas o suavemente radiales, algo convergentes en los extremos.
Estrías 13-14 en 10 u al centro, más numerosas en los extremos. Lar-
go 38-65 u; ancho 6-9 u.

Taxon común en el material de Concepción, siempre presentan-
do un estigma en el área central. En la Laguna Pineda se presentó
durante todo el año, en el Río Andalién, Laguna La Posada y La-
guna Lo Méndez fue esporádica.

Distribución conocida para Chile: Río Puelo, Isla Poluqui; Lago
Risopatrón, Afluente del Lago Risopatrón, Río Pascua, San Vicente,
Termas de Puyehue, Lago Rupanco, Pelluco, Calbuco, Fiordo de
Reloncaví (Krasske, 1939); Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948); Isla
Dawson, San Isidro en Cabo Froward, Al S.W. de Bahía Inútil, Río
Alerce, Monte Tronador (Krasske, 1949).

4. Cymbella sinuata Gregory var. sinuata
Fig: 99

Gregory, W., Micr. Jour., p. 4, Lám. 1, fig. 17 (1856).

Valvas poco asimétricas, lineares, gibosas en la parte media
del lado ventral, con extremos anchos, obtuso-redondeados. Area
axial angosta; área central grande, alcanzando el margen ventral
de la valva; un estigma presente. Rafe filiforme, derecha, excéntri-
ca. Estrías radiales en toda la valva; en la parte media del lado
dorsal existe una estría más corta. Estrías 12-14 en 10 u. Largo 13-
16 u; ancho 4-5 u.

Taxon de aguas dulces de amplia distribución geográfica. Pre-
sente esporádicamente en muestras del Río Andalién, Río Bío-Bío
y Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Lago Llanquihue (Krasske,
1939); Laguna Chica de San Pedro (Rivera, 1970); Estero Lenga
(Rivera, en Rivera et al., 1973).

res

5. Cymbella naviculiformis Auersw. var. naviculiformis
Fig. 97

Auerswald in Rabenhorst, Alg. Eur., N? 1065 (1861).

Valvas elíptico-lanceoladas, debilmente asimétricas, extremos re-
dondeados, rostrado-capitados. Area axial angosta, abriéndose leve-
mente hacia la parte media de la valva; área central grande, sub-
orbicular. Rafe levemente excéntrica. Estrías radiales en toda la
valva, regularmente acortadas en la parte media. Estrías 12-14 en
10 u en la parte media de la valva, 18-20 en 10 u hacia los extre-
mos. Largo 38-42 u; ancho 8-11 u.

Presente esporádicamente en muestras del Río Bío-Bío, Laguna
Pineda y Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Posa Chico en Patagonia
(Muller, 1909); Río Puelo, Isla Poluqui; Lago Risopatrón, Afluente
del Lago Risopatrón, Río Pascua, Termas de Puyehue, Lago Llan-
quihue, Pelluco, Calbuco (Krasske, 1939); Lago Lynch, Al S.W. de
Bahía Inútil, A 100 km de Pta. Arenas, Río Alerce, Monte Tronador,
Mallín Chileno (Krasske, 1949); Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948).

6. Cymbella hauckú Van Heurck var. chilensis var. nova
Fig. 100

Diferens varietate hauckiíl per strias convergentes in api-
cibus et per strias densioriter punctatas (24 in 10 u). Striae
centrales 10 in 10 u (dorsales); 12 in 10 u (ventrales), den-
siores in apicibus (1417 in 10 u). Longitudo 67-72 u. Lati-
tudo 16-18 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Laguna La Po-
sada.

DIAT-CONC 540, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Valvas lanceoladas, asimétricas; lado dorsal fuertemente con-
vexo, lado ventral levemente convexo; extremos algo producidos,
obtuso-edondeados. Área axial angosta ensanchándose levemente
hacia el centro de la valva; área ceniral dilatada, suborbicular.
Rafe levemente excéntrica angostándose paulatinamente hacia los
extremos proximales y distales, levemente convexa hacia el lado
dorsal; extremos proximales suavemente curvados en la misma di-
rección. Estrías punteadas, puntos 24 en 10 u en toda la valva; es-
irías radiales en la parte central y convergentes en los extremos.
Estrías dorsales 10 en 10 u y 12 en 10 u las ventrales en el centro
de la valva, más numerosas hacia los extremos, 14-17: en 10 u.

Se diferencia de la variedad tipo por la orientación de las
estrías que en el taxon de Van Heurck son fuertemente radiales

«O

en los extremos de la valva, y por el número de puntos en cada
estría. Estos han sido señalados como de 16 en 10 u al centro de
la valva y de 20-22 en 10 u en los extremos. La variedad chilensis
var. nova presenta 24 puntos en 10 u en toda la valva.

En la Academia de Ciencias de Filadelfia tuve oportunidad de
estudiar el isotipo de C. hauckiú y también otros ejemplares de
esta especie recolectados en los Estados Unidos. En todos ellos las
estrías son fuertemente radiales en los extremos y los puntos que las
formas son más toscos y más separados entre sí.

Las variedades descritas para C. hauckit difieren de la varie-
dad chilensis var. nova por las mismas razones ya señaladas.

C. hauckii var. chilensis var. nova es cercana a C. acutiuscula
Cleve (Sv. Vet-akad. Hanadl., n.f, 26(2): 164 Lám. 4, fig. 26, 1894),
diferenciándose de ella por la forma de los extremos valvares, por
el mayor número de estrías y convergencia de ellas en los extre-
mos valvares y por la forma del área central.

Fue encontrada exclusivamente en muestras de verano de la
Laguna La Posada.

7. Cymbella affinis Kutz. var. affinis
Fig. 101-102

Kuizing, «E. 1. Bacill., p: 180, Lámsb ¿dia 151824).

Valvas asimétricas, anchas, más o menos lanceoladas a elíp-
ticas, lado dorsal fuertemente convexo, lado ventral poco convexo
a más o menos recto, extremos levemente rostrados, subtruncados.
Area axial angosta, no dilatada o muy poco dilatada en el nódu-
lo central. Rafe excéntrica, levemente arqueada hacia el lado dor-
sal. Estrías notorias, lineadas, 10-13 en 10 u, suavemente radiales;
frente a la estría media del lado ventral existe un punto aislado.
Largo 30-50 u; ancho 9-13 u.

En la fig. 102 mostramos una valva que presenta una hendi-
dura subcentral en el lado ventral de la valva. Esta característica
la acerca a C. excisa Kutz. pero en ella la hendidura es central,
no subcentral. He visto el tipo N* 81 de Smith para su Cocconema
excisum donde el lado ventral de la valva no es tan recto como en
nuestro ejemplar y todas las medidas de ese taxon son inferiores
a las nuestras. Cleve (1894, p. 172) indica que C. affinis es una
especie variable y que algunas veces presenta esta hendidura en
la mitad de la valva.

Fue encontrada esporádicamente en muestras del Río Andalién,
Río Bío-Bío, Laguna Pineda y Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Posa Chico en Patagonia
(Muller, 1909); Trípoli en Puyehue (Frenguelli, 1935); Calbuco, Pu-
yuhuapi, Lago Risopatrón, Afluente del Lago Risopatrón, Río Pas-
cua, R. Tronador, R. de Ventisquero Eisach, Ventisquero Yacaf, Cer-

pad

ca de Puyuhuapi, Lago Puyuhuapi, L. Rupanco, L. Llanquihue, Isla
Poluqui (Krasske, 1939); Puyuhuapi (Krasske, 1941); San Isidro en
Cabo Froward (Krasske, 1949); Frente a Antofagasta, Frente a Val-
paraíso (Meyer, 1970).

8. Cymbella tumida (Bréb.) Van Heurck var. tumida
Fig. 103

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belg., p. 64, Lám. 2, fig. 10 (1880).

Valvas en forma de bote, lado dorsal fuertemente convexo, la-
do ventral más o menos recto, a veces un poco cóncavo con la
parte central gibosa; extremos anchos claramente rostrados, trun-
cado-redondeados. Área axial angosta dilatándose en el nódulo me-
dio en un área central suborbicular; en la parte ventral del área
central existe un estigma alargado. Rafe un tanto excéntrica, ar-
queada, angostándose hacia los extremos proximales y distales. Es-
trías groseramente punteadas, radiales en el centro de la valva
donde alternan estrías largas y cortas, paralelas a convergentes en
los extremos. Estrías 9-11 en 10 u. Largo 55-67 u; ancho 16-18 u.

Fue encontrada en muestras de verano y otoño recolectadas
en el Río Andalién, Río Bío-Bío y Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: Provincia de Santiago (Espi-
nosa, 1923); Trípoli de Puyehue (Frenguelli, 1935); Lago Ranco (Ri-
vera, 1970); Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973); Bahía de
Dichato (Rivera, 1974).

9. Cymbella tumida f major Rich
Fig. 104

Rich, F., Trans. Roy. Soc. S. Africa, 24(3): 216, Lám. 10, fig. H (1937).

Se caracteriza por su gran tamaño y por la forma de los ex-
tremos valvares que son suavemente producidos, no claramente
rostrados. Esta característica la acerca a C. tumida var. gracilis
Hustedt (1938, Arch. Hydrobiol., 15: 433, Lám. 26, fig. 5) la cual es
probablemente un sinónimo del taxon de Rich. Estrías 9-10 en 10 u.
Largo 91-97 u; ancho 12-21 u.

Presente esporádicamente en el Río Andalién, Río Bío-Bío y
Laguna Pineda.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

10. Cymbella tumida var. australica (Schm.) Hust. Í.
rostrata Í. nova
Fig. 105

Diferens varietate australica per marginem dorsalem valde
convexum et apicibus rostratis, truncatis, obliquis. Striae
10 in 10 u. Longitudo 48-60 u. Latitudo 15-17 u.

Enel

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Río Andalién.
DIAT-CONC 702, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

Se caracteriza por presentar el lado dorsal fuertemente con-
vexo y los extremos claramente rostrados, oblicuos y truncados. El
resto de las características coincide con la forma típica, presentan-
do un paulatino acortamiento de las estrías en la parte central de
la valva. Estrías 10 en 10 u. Largo 48-60 u; ancho 15-17 u.

Fue encontrada solamente en el Río Andalién durante el ve-
rano y otoño.

11. Cymbella cymbiformis Agardh var. cymbiformis
Fig. 106

Agardh, C.A., Consp. Crit., Diat., p. 10 (1830).

Valvas con aspecto de bote, lado dorsal convexo, lado ventral
recto, giboso en su parte media; extremos obtusos, truncado-redon-
deados. Area axial angosta; área central algo dilatada, lanceola-
da; en el lado ventral existe un punto aislado. Rate debilmente
excéntrica, un poco arqueada, extremos proximales levemente cur-
vados hacia el lado ventral. Estrías finamente lineadas, suavemen-
te radiales al centro y convergentes en los extremos. Estrías 8-10
en 10 u al centro de la valva, más numerosas hacia los extremos.
Largo 80-95 u; ancho 12-16 u.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién, Lagu-
na Pineda, Arroyo Leonera, Laguna La Posada y Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: Río Baguales y sus afluentes
(Muller, 1909); Trípoli en Isla de Chiloé (Frenguelli, 1930); Trípoli
de San Pedro de Atacama (Frenguelli, 1934); Trípoli en Isla Cailín
(Frenguelli, 1935); San Vicente, Termas de Puyehue, Lago Rupan-
co, L. Llanquihue, Calbuco, Fiordo de Reloncaví, Lago Risopatrón,
Afluente del Lago Risopatrón, Río Pascua, R. Puelo (Krasske, 1939);
Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948); Monte Tronador, Río Alerce,
Al S.W. de Bahía Inútil, Cabo Froward, Isla Dawson (Krasske, 1949);
Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973).

12. Cymbella lanceolata (Ehr.) Van Heurck var. lanceolata
Fue señalada para la Laguna Chica de San Pedro por Rivera,

1970.
Género GOMPHONEMA Agardh

Clave para los taxa de Gomphonema.

1. Estrías, en la parte media de la valva, alternativamente
largas "YN ¿EOLÍES, smart atado EP 2
1. Estrías no alternativamente largas y COTÍAS oonnccccnncacaconncanicnn 3

ENE > 00

2. Extremo superior de la valva capitado ....... (1) G. constrictum
2. Extremo superior no capitado ................. (2) G. constrictum var.
capitatum
3. Extremo superior de la valva bastante ensanchado .............
O MG ALAS ERA (3) G. acuminatum
3. Extremo superior no ensanchado. semental
Eno Sapernor aADICUIAO A o p
NNMPESMTEno” sSUperior 10 ADICTO Eon orcos 6
5. Valvas claviformes con la parte superior ancha; estrías
SEI. TO O A (4) G. turris

5. Valvas linear lanceoladas; estrías 12-13 en 10 U ........n...anononanan...
O OA A o LS EIA AAA (5) G. martini

6 Extremos proximales de la raíe levemente curvados en la
PERE CIA A 7
6. Extremos proximales de la rafle derechoS ..cconnccccoccaaoconimeceos 9
7. Estrías cruzadas por una línea longitudinal media; valvas
de gran tamaño, 84-92 u de largo ......cca.oaoo (6) G. herculeanum
7. Estrías no cruzadas por una línea longitudinal; el largo no
ESA E UI A A 8
8. Valvas con los márgenes ondulados ................. (7) G. montanum
8. Valvas con márgenes no ondulados ......... (8) G. montanum var.
subelavatum
9. A ambos lados del área central existe una estría más
A A A 10
9. Estrías regularmente acortadas en el área central ........... 11
10. Valvas lanceoladas con un extremo subcapitado y el otro
rostrado-TedondeddoO cmciccocncconcnnonnonenconnnnms 20 Pa (9) G. parvulum
10. Valvas claviformes con extremos a penas producidos, ob-
tuso-redondeados eooooococncomanmeano (10) G. parvulum var. micropus
11. Area central pequeña, redondeada ................ (11) G. hebridense
11. Area central grande, lanceolada ..............aaecnannaneno» (12) G. gracile

1. Gomphonema constrictum Ehr. var. constrictum
Fig. 107

Ehrenberg, C.G., Abh. Akad. Berlin, p. 63 (1830).

Valvas claviformes, ensanchadas en su parte media; extremo
superior ancho, redondeado-truncado, extremo inferior más angos-
to, redondeado. Área axial angosta; área central pequeña, un tan-
to dilatada transversalmente, con un estigma a un lado de la val-
va. Estrías punteadas, debilmente radiales, en la parte central son
alternativamente largas y cortas. Estrías 10-12 en 10 u. Largo 38-
45 u; ancho 10-11 u.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién, La-
guna Pineda, Arroyo Leonera y Laguna Lo Méndez.

0

Distribución conocida para Chile: Trípoli de San Pedro de Ata-
cama (Frenguelli, 1934); Lago Puyehue, L. Rupanco, L. Llanquihue,
Calbuco (Krasske, 1939); Santiago y alrededores (Negrete, 1964);
Bahía de Concepción (Rivera, 1969); Bahía de Dichato (Rivera,
1974).

2. Gomphonema constrictum var. capitatum (Ehr.) Cleve
Fue señalado para la Bahía de Concepción por Rivera, 1969.

3. Gomphonema acuminatum Ehr. var. acuminatum
Fig. 108

Ehrenberg, C.G., Infus., p. 217, Lám. 18, fig. 4 (1838).

Valvas claviformes, ensanchadas en la parte media; extremo
superior bastante ensanchado, apiculado; parte inferior de la val-
va de lados paralelos con extremo redondeado. Area axial angos-
ta; área central redondeada llevando, a un lado, un estigma aislado.
Rafe levemente ondulada. Estrías finamente punteadas, radiales, re-
gularmente acortadas en la parte media de la valva. Estrías 10-11
en 10 u. Largo 40-60 u; ancho 6-10 u.

Taxon cosmopolita, indicador de aguas con desperdicios de
hierro. Bastante común en muestras del Río Andalién y Laguna Pi-
neda, presente durante casi todo el año.

Distribución conocida para Chile: Calbuco, Termas de Puyehue,
Lago Rupanco, Cerca de Puyuhuapi (Krasske, 1939); Santiago y
alrededores (Negrete, 1964); Bahía de Concepción (Rivera, 1969);
Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973).

4. Gomphonema turris Ehr. var. turris
Fig. 109

Ehrenberg, C.G., Amer., p. 128 (1843); Ibid., Mikrog., Lám. 2(ID),
fig. 42 (1854).

Valvas claviformes con la parte superior ancha, angostándose
hacia el extremo superior que es apiculado; parte inferior de lados
cóncavos con el extremo redondeado. Area axial angosta, nítida;
área central algo dilatada, redondeada, con un estigma aislado.
Rafe derecha angostándose hacia los extremos proximales y dista-
les. Estrías radiales, nítidamente punteadas, 9 en 10 u. Largo 56-97 u;
ancho 13-14 u.

Los ejemplares encontrados en la zona de Concepción difieren
del señalado por Ehrenberg (loc. cit.) en la mayor inclinación de
las estrías. Gomphonema turris es cercana a G. montanum var.
suecica Grunow in Van Heurck (1881, Lám. 23, fig. 12) debido al
aspecto de la valva, al número de estrías y las dimensiones del
frústulo. En líneas generales la diferencia radica en que en G. turris

ON, ct

las valvas son más anchas y con la parte inferior de lados más
cóncavos que en G. montanum var. suecica.

Fue encontrada solamente en la Laguna Pineda durante los
meses de verano y otoño.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

5. Gomphonema martini Fricke var. martini
Fig. 110

Fricke in Schmidt, Atlas, Lám. 238, fig. 22-25 (1904).

Valvas linear-lanceoladas; extremo superior apiculado, extremo
inferior obtuso-redondeado. Area axial linear, nítida; área central
levemente producida, llevando a un lado 2 estigmas aislados. Rafe
derecha angostándose hacia los extremos proximales y distales. Es-
trías notoriamente punteadas, levemente radiales al centro de la
valva, fuertemente radiales hacia los extremos, 12-13 en 10 u. Lar-
go 136-145 u; ancho 21-23 u.

Los frústulos encontrados en la zona de Concepción presentan
un mayor tamaño que el señalado para esta especie, coincidiendo
el resto de las características.

Fue encontrado solamente en la Laguna Pineda, escaso.

No había sido señalado anteriormente para Chile.

6. Gomphonema herculeanum Ehr. var. herculeanum
Pig: : 1H

Ehrenberg, C.G., Ber. Akad. Wiss. Berlin, p. 78 (1845).

Valvas oblongo-lanceoladas a clavadas con el extremo supe-
rior ancho, redondeado a subtruncado. Area axial nítida, angosta
y linear; área central pequeña, suborbicular, con un estigma a un
lado de ella. Rafe derecha angostándose paulatinamente hacia los
extremos proximales y distales; extremos proximales levemente cur-
vados en la misma dirección. Estrías radiales, regularmente acor-
tadas en la parte central; línea longitudinal mediana cruzando las
estrías a cada lado de la valva. Estrías 10-11 en 10 u. Largo 84-
92 u; ancho 20-22 u.

Taxon bastante común en el Río Bío-Bío donde algunas veces
se presentó con gran abundancia; fue encontrado también en el
Río Andalién pero en escasa cantidad.

Distribución conocida para Chile: solamente se la había seña-
lado para el Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973).

7. Gomphonema montanum Schumann var. montanum
FigY: HPA

Schumann, J., Diat. der. Hohen Tatra, p. 67, Lám. 3, fig. 35 (1867).
Valvas levemente cuneiformes, más o menos trionduladas, ex

7. JUAN

tremo superior disminuido, subrostrado, extremo inferior redondeado.
Area axial nítida; área central dilatada, subredondeada, llevando
a un lado un estigma aislado. Rafe derecha. Estrías levemente ra-
diales, a veces algo paralelas en la parte inferior; en la parte me-
dia de la valva y a un solo lado existe una estría más corta. Estrías
210 en 10 u. Largo 60-62 u; ancho 9-10 u.

Solamente encontrada en el Arroyo Leonera durante el verano.

Distribución conocida para Chile: Trípoli a 2 km de Chorrillos
(Frenguelli, 1929); Isla Santa María, Río Tubul (Rivera, 1974).

8. Gomphonema montanum var. subclavatum Grunow
Pig. HS
Grunow, in Van Heurck, H., Syn. Diat. Belg., p. 125, Lám. 23, fig.
38 (1885).

Difiere de la variedad tipo por la ausencia de ondulaciones de
los márgenes de la valva; la valva es algo ensanchada en la parte
central. Estrías 12-13 en 10 u. Largo 20-40 u; ancho 46 u.

Presente esporádicamente en el material estudiado y en es-
casa cantidad: Río Andalién, Río Bío-Bío, Laguna Pineda, Arroyo
Leonera y Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: solamente se la había seña-
lado para Puyuhuapi (Krasske, 1941).

9. Gomphonema parvulum Kutz. var. parvulum
Fig. 114

Kutzing, F.T., Sp. Alg., p. 65 (1849).

Valvas lanceoladas con un extremo redondeado-capitado o sub-
capitado y el otro angosto, rostrado.- Area axial angosta, linear; área
central pequeña, más expandida hacia un lado, un estigma aislado
presente. Rafe derecha, filiforme. Estrías levemente radiales, 13-15
en 10 u. Largo 23-27 u; ancho 6-7 u.

Presente esporádicamente en muestras de la Laguna Pineda,
Arroyo Leonera y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Calama, T. en Isla
de Chiloé (Frenguelli, 1930); Trípoli de San Pedro de Atacama
(Frenguelli, 1934); Trípoli en Isla Cailín (Frenguelli, 1935); Bahía de
Coliumo, B. de Dichato, San Vicente, Lago Puyehue, Termas de
Puyehue, Lago Llanquihue, Calbuco, Fiordo de Reloncaví, Lago Ri-
sopatrón, Afluente del Lago Risopatrón, Río Pascua, R. Puelo, Río
de Ventisquero Yacaf, Río de Ventisquero Eisach (Krasske, 1939);
Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1948); Maillín Chileno, Al S.W. de
Bahía Inútil, Isla Dawson, A 67 y 100 km de Punta Arenas, Lago
Lynch, Monte Tronador, Lago General Carrera (Krasske, 1949); San-
tiago y alrededores (Negrete, 1964); Estero Lenga (Rivera, en Ri-
vera et al., 1973; y Rivera, 1974).

N/A

10. Gomphonema parvulum var. micropus (Kutz.) Cleve
Figi-115

Cleve, P.T., Sv. Vet.-akad. Handl., 26(2): 180 (1894).

Valvas levemente claviformes con el extremo superior obtuso
y el extremo inferior subagudo. Area axial linear, nítida; área cen-
tral dilatada transversalmente llevando a un lado un estigma ais-
lado. Rafe derecha. Estrías radiales, 12-13 en 10 u. Largo 23-26 u;
ancho 6-7 u.

Se diferencia de la variedad tipo por la forma de la valva.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién, Río
Bío-Bío, Laguna Pineda y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Posa entre Kark y Tweedy
en Patagonia (Muller, 1909).

11. Gomphonema hebridense Gregory
Fig. 116

Gregory, W., Quart. Jour. Micr. Sci., 2: 99, Lám. 4, fig. 19 (1854).

Valvas linear-lanceoladas, ensanchadas en la parte media, ex-
tremos subagudos, redondeados. Área axial muy angosta; área cen-
tral pequeña, redondeada, con un estigma a un lado de ella. Rafe
derecha. Estrías finamente punteadas, levemente radiales, 13 en
10 u. Largo 7982 u; ancho 10-11 u.

Fue encontrada esporádicamente y en escasa cantidad en mues-
tras de la Laguna La Posada.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

12. Gomphonema gracile Ehr. var. gracile
Pag, 1 LE

Ehrenberg, C.G., Inf., p. 217, Lám. 18, fig. 3 (1838).

Valvas lanceoladas con extremos muy poco diferentes, agudos
o subagudos, el inferior de lados algo cóncavos. Área axial angos-
ta: área central más ensanchada llevando a un lado un estigma
aislado. Estrías levemente radiales, 13-14 en 10 u. Largo 50-60 u;
ancho 8-10 u.

Taxon muy común en la Laguna Pineda donde se presentó
durante todos los meses del año, esporádica en el Río Andalién,
Arroyo Leonera y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Trípoli en Isla Cailín (Pren-
guelli, 1935); Bahía de Coliumo, B. de Dichato, San Vicente, Corral,
Lago Puyehue, Termas de Puyehue, Lago Rupanco, L. Llanquihue,
Pelluco, Calbuco, Isla Poluqui, Fiordo de Reloncaví, Lago Risopa-
trón, Afluente del Lago Risopatrón, Río Pascua, R. Tronador, R. de
Ventisquero Eisach, Ventisquero Yacaf, Río Puelo, Puyuhuapi; Isla

<=

Dawson, A 10 km de Río Rubens, Río Rubens, Puyuhuapi (Krasske,
1939); Cabo Froward, Al S.W. de Bahía Inútil, Lago Lynch, Río
Alerce, Lago General Carrera, Monte Tronador, Mallín Chileno (Krass-
ke, 1949); Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973).

Familia EPITHEMIACEAE
Género EPITHEMIA Brébisson

Clave para los taxa de Epithemia.

l. Extremos valvares levemente producidos, obtuso-redondea-
Cicas ales o od a a de Bras dei] (1) E. zebra

Extremos restrados a capltades metas daiaass (2) E. sorex

1. Epithemia zebra (Ehr.) Kutz. var. zebra
Fig. 118

Kutzing; ET, ¿Bacill:, py:34/Lámi 5,08. 12 (1844):

Valvas con el lado dorsal fuertemente convexo, lado ventral
recto a levemente cóncavo; extremos valvares poco producidos, ob-
tuso-redondeados. Costillas robustas, 5-6 en 10 u, irregularmente es-
paciadas, alternando con 3 o más estrías fuertemente punteadas.
Estrías 12-13 en 10 u. Largo 40-44 u.

Taxon de aguas dulces y salobres, especialmente en las es-
tancadas ,cosmopolita.

Presente esporádicamente en muestras del Río Bío-Bío, Laguna
Pineda y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Río Baguales y sus afluentes,
Posa Kark, Posa Chico, Río 'Tres Pasos (Muller, 1909); Trípoli a 2 km
de Chorrillos (Frenguelli, 1929); Trípoli de Calama, T. en Isla de
Chiloé (Frenguelli, 1930); Trípoli de San Pedro de Atacama (Fren-
guelli, 1934); Trípoli en Isla Cailín, T. de Puyehue, (Frenguelli, 1935);
Trípoli de Arica (Frenguelli, 1938); Lago Risopatrón, Afluente del
Lago Risopatrón, Río Pascua, Ventisquero Yacaf, Calbuco, Lago
Puyehue, Termas de Puyehue, Lago Rupanco, L. Llanquihue, 5-8 km
al norte de Calbuco, Puyuhuapi (Krasske, 1939); Tierra del Fuego
(Cleve-Euler, 1948); Isla Dawson, San Francisco al N. de Pta. Arenas,
Cabo Froward, Monte Tronador, Mallín Chileno (Krasske, 1949);
Bahía de Concepción (Rivera, 1969 y 1974); Lago Ranco, L. Laja,
Laguna Chica de San Pedro (Rivera, 1970); Lago Peñuelas (Nava-
rro y Avaria, 1971); Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973).

2. Epithemia sorex Kutz. var. sorezx
Kutzing, F.T., Bacill., p. 33, Lám. 5, fig. 12 (1844).

Valvas fuertemente arqueadas, lado dorsal convexo, lado ven-
tral cóncavo; extremos rostrados a capitados. Estrías finamente pun-

BO. IEA

teadas, radiales, 13-14 en 10 u. Largo 33-37 u.

Fue encontrada solamente en la Laguna Lo Méndez durante
verano y otoño.

Distribución conocida para Chile: Río Puelo, Cerca de Puyuhua-
pi (Krasske, 1939); Lago Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971).

Género RHOPALODIA O. Muller

Clave para los taxa de Rhopalodia.

1. Valvas con el lado dorsal giboso en su parte media, lado
sentral .cosi regio, castillas! 7-8. en VII enanos prrmaricinioieras
E APRA AMALA. (1) R. gibba var. ventricosa
1. Valvas con el lado dorsal muy convexo y lado ventral cón-
O, cosullds” O er O ld citebicio (2) R. musculus

1. Rhopalodia gibba (Ehr.) O. Muller var. ventricosa

(Kutz.) Perag. «4 Perag.
Fig. 119

Peragallo 4 Peragallo, Diat. Mar. France, 1897-1908, p. 302, Lám. 77,
fig. 3-5 (1900).

Valvas alargadas, lado dorsal giboso en su parte media, lado
ventral recto o casi recto; extremos obtusos, inclinados hacia el
lado ventral. Costillas 7-8 en 10 u. Largo 53-56 u; ancho 10-11 u.

Presente esporádicamente en el Río Andalién, Río Bío-Bío, La-
guna Pineda y Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Río Tres Puentes en Pta. Are-
nas (Frenguelli, 1923); Trípoli a 2 km de Chorrillos (Frenguelli,
1929); Trípoli de Calama (Frenguelli, 1980); Trípoli de San Pedro
de Atacama (Frenguelli, 1934); Lago Rupanco (Krasske, 1939).

2. Rhopalodia musculus (Kutz.) O. Muller var. musculus
Fig. “120

Muller, O., Hedwigia, 38: 278 (1889).

Valvas fuertemente argueadas, lado dorsal muy convexo, lado
ventral cóncavo, extremos agudos. Costillas 5-6 en 10 u, alternando
con estrías muy finas, punteadas. Largo 28-33 u; ancho 10-12 u.

Fue encontrada esporádicamente en muestras del Río Bío-Bío,
Laguna Pineda, Arroyo Leonera y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Calbuco, Provincia de Aysén
al interior del Fiordo de Puyuhuapi, Río Pascua, Dichato, Bahía
de Coliumo, Isla Llancahue (Krasske, 1939); Puyuhuapi (Krasske,

1941); Bahía de Concepción (Rivera, 1969).

E ÑÁ

Familia NITZSCHIACEAE

Género HANTZSCHIA Grunow

Clave para los taxa de Hantzschia.

Valvas superiores a 300 u en longitud ............... (1) HB. elongata
Medyes Mesta: 190" u, de TADO, saco canaia coda
Extremos valvares obtusos, alargados
EXIremos "Subcaprlados O CEAPRAÍOS rmminciateanoraan
Extremos subcapitados; estrías 18-19 en 10 U .......uannocacocconeenorerassas
Ir aras (4) H. amphioxys var. chilensis var. nova
Extremos capitados; estrías 20-20 en 10 U emcnnccninnacocannacaesrscemecsos

rd co ria odo: (3) H. amphioxys Í. capitata

nd pala

wm

1. Hantzschia elongata (Hantz.) Grun. var. elongata
Big 122

Grunow in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet.-akad. Handl., N.F. 17(2): 104
(1880).

Valvas angostas, lineares, arqueadas en la parte media y con
extremos disminuidos, capitado-redondeados. Puntos de la quilla 6-7
en 10 u, los dos centrales algo más separados. Estrías transapicales
finas, 14-15 en 10 u. Largo 310-335 u; ancho 10-11 u.

Presente esporádicamente en la Laguna Pineda.

Distribución conocida para Chile: Río Grande (Cleve, 1900); Po-
sa Chico en Patagonia (Muller, 1909).

2. Hantzschia amphioxys (Ehr.) Grunow var. amphioxys
Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, 1974.

3. Hantzschia amphioxys tf capitata O. Muller
Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,

1973.

4. Hantzschia amphioxys var. chilensis var. nova
Pig: T21

Valvae margine dorsali convexae, margine ventrali concavae
in parte media, convexae versus apices, apicibus cuneatis,
subcapitatis. Punctae carinae conspicuae, separatae interva
llis diversis, 7-10 in 10 u, duabus punctis centralibus distan-
tioribus. Striae tenues, distincte punctatae, 18-19 in 10 u. Lon-
gitudo 93-110 u. Latitudo 10-13 u.

LOCALIDAD TIPO: Chile, Provincia de Concepción, Río Andalién.
DIAT-CONC 699, Departamento de Botánica, Universidad de Con-
cepción, Chile, TYPUS.

2, e

Valvas con el lado dorsal convexo y el lado ventral cóncavo
en su parte media, convexo hacia los extremos que son cuneados,
subcapitados. Puntos de la quilla notorios, irregularmente espacia-
dos, 7-10 en 10 u, los dos centrales más separados. Estrías finas,
18-19 en 10 u, claramente punteadas. Largo 93-110 u; ancho 10-13 u.

Taxon bastante cercano a H. amphioxys var. mugadensis
Gandhi (1959, p. 108, fig. 26-27, sin tipo designado), de la cual se
diferencia principalmente por sus mayores dimensiones.

Fue encontrada en muestras de verano recolectadas en el Río
Andalién.

Género NITZSCHIA Hassall

Clave para los taxa de Nitzschia.

1: ¡Estremos, ¡largos y delgados cidade (1) N, acicularioides

la Extremos, ma notoriamente largoso!.. siii dad. Z

2. Eje apical sigmoide ............... (7) N. obtusa var. scalpelliformis

ZA ES apical dedscho e cn DA. Ona... 3

+ pOulls fuertemente excéntrico. a A ad 4

3. Quilla central o levemente excéntrica moanacaccncacocacacanonacnononiinnnnocecinnees E

4. Valvas con pliegues longitudinales occiso (8) N. levidensis

2'"Valvas' sin pliegues dengitudinales A... Eldido

5. Valvas suavemente contraídas en la parte central ..................
E TT IA (2) N. thermalis var. minor

5 Walvas: mo. contraídas en. le iparntél. contaran cs 6

6 Puntos, dela quilla,.13-18,en 10 Uta (3) N. kutzingiana

6. Puntos de la quilla 6-1 en 10 u ........ (4) N. amphibia var. umbrosa

7. Valvas lanceoladas; quilla subcentral manana... (5) N. dissipata

7. Valvas lineares; quilla notoriamente excéntrica mmccnnacococcnoonennsccions

1. Niteschia acicularioides Hustedt var. acicularioides
Fares 23

Hustedt, F., Osterr. Bot. Zeit., 106(5): 415, fig. 22-24 (1959).

Valvas lineares, angostas, márgenes paralelos y extremos cu-
neados, claramente producidos, subcapitados. Puntos de la quilla
13-15 en 10 u. Estrías transapicales inconspicuas. Largo 53-64 u;
ancho 3-4 u.

Se diferencia de N. subrostratoides Cholnoky por sus lados
perfectamente lineares, por la forma de los extremos valvares y
por sus estrías inconspicuas.

Fue encontrada esporádicamente en el Río Andalién, Río Bío-
Bío y en la Laguna La Posada.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

pe, 7 E

2. Nitezschia thermalis (Ehr.) Auersw. var. minor Hilse
Fig. 124

Hilse, W., Berl. Schl. Gessell. Vaterl. Cult, p. 67 (1860).

Valvas linear-oblongas con una constricción en su parte media
y con extremos cuneado-rostrados. Puntos de la quilla 10-11 en 10 u.
Estrías numerosas, 33-35 en 10 u. Largo 25-35 u; ancho 5-6 u.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién y Arro-
yo Leonera.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

3. Nitzschia kutzingiana Hilse var. kutzingiana
Fig. 125

Hilse, W., Berl. Schl. Gessell. Vaterl. Cult., p. 67 (1860).

Valvas lanceoladas con extremos levemente producidos, redon-
deados. Puntos de la quilla 13-16 en 10 u. Estrías muy finas, alre-
dedor de 35 en 10 u. Largo 37-45 u; ancho 4-5 u.

Taxon presente en todos los lugares estudiados: Río Andalién,
Río Bío-Bío, Laguna Pineda, Arroyo Leonera, Laguna La Posada y
Laguna Lo Méndez. Particularmente abundante en el Río Bío-Bío
donde se presentó durante todo el año.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

4. Nitzschia amphibia Grun. var. umbrosa Cleve-Euler
Rgova126

Cleve-Euler, A., Sv. Vetakad. Handl., 3(3): 87, fig. 1496 1 (1952).

Valvas linear-llanceoludas con extremos angostos, agudos. Pun-
tos de la quilla 6-7 en 10 u. Estrías notorias, finamente punteadas,
15 en 10 u. Largo 29-33 u; ancho 4-5 u.

Taxon muy escaso en el material estudiado, presente esporá-
dicamente en muestras del Río Andalién y Laguna La Posada.

No había sido señalado anteriormente para Chile.

5. Nitzschia dissipata (Kutz.) Grun. var. dissipata
Pig 127

Grunow in Cleve-Grunow, Sv. Vet.-Akad. Handl., N.F., 17(2): 90 (1880).

Valvas lanceoladas con extremos subrostrados. Quilla levemen-
te excéntrica; puntos de la quilla 7-8 en 10 u. Estrías muy finas, a
penas diferenciables. Largo 29-42 u; ancho 4.5-9 u.

Taxon de aguas dulces tolerante a aguas contaminadas.

Muy común en el material del Río B.o-Bío donde se la encon-
tró durante todo el año, presente esporádicamente en el Río Anda-
lién, Arroyo Leonera y Laguna Lo Méndez.

a

Distribución conocida para Chile: Bahía Orange en Cabo de
Hornos (Petit, 1889); Río Baguales y sus afluentes (Muller, 1909);
Lago Puyehue, Termas de Puyehue, Lago Rupanco, L. Llanquihue,
Afluente del Lago Risopatrón, Río Pascua, Calbuco, Cerca de Puyu-
nuapi (Krasske, 1939); Santiago y alrededores (Negrete, 1964); Es-
tero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973); Bahía de Coquimbo,
Golfo de Quetalmahue, Bahía de Concepción, Isla Santa María
(Rivera, 1974).

6. Nitzschia linearis (Agardh) W. Sm. var. linearis
Ha, 128

W. Smith, Syn. Brit. Diat., 1, p. 39, Lám. 13, fig. 110 (1853).

Valvas lineares con extremos atenuados. Quilla excéntrica; pun-
tos de la quilla 12-13 en 10 u, los dos centrales más separados. Es-
trías finas, 28-30 en 10 u. Largo 100-115 u; ancho 4.56 u.

Presente esporádicamente en muestras del Río Andalién, Río
Bío-Bío y Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Río Baguales y sus afluentes,
Posa Kark, Arroyo Toro (Muller, 1909); Río Tres Puentes en Pta.
Arenas (Frenguelli, 1923); Trípoli de San Pedro de Atacama (Fren-
guelli, 1934); Calbuco, Lago Risopatrón, Río Pascua, Termas de
Puyehue, Lago Rupanco, L. Llanquihue, Calle en San Vicente (Kras-
ske, 1939); Mallín Chileno, A 100 km de Pta. Arenas (Krasske, 1949).

7. Niteschia obtusa W. Sm. var. scalpelliformis Grunow
Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, 1974.

8. Nitzschia levidensis (W. Sm.) Van Heurck var. levidenstis

Fue señalada para la Laguna Chica de San Pedro por Rivera,
1970.

Familia SURIRELLACEAE
Género STENOPTEROBIA Brébisson

1. Stenopterobia intermedia (Lewis) Fricke var. intermedia
Fig. 129-130

Fricke in Hustedt, A. Schm. Atlas, Lám. 284, fig. 3-5, 7-12,14 (1912).

Valvas lineares, sigmoides ,con extremos redondeados. Costillas
pequeñas, 4-6 en 10 u. Estrías finas, 24 en 10 u. Pseudorafe central,
nítido. Largo 155-160 u; ancho 5-6 u.

Fue encontrado en la mayoría de los lugares estudiados; Río
Andalién, Río Bío-Bío, Laguna Pineda, Laguna La Posada, Laguna
Lo Méndez. Particularmente abundante en la Laguna Pineda, pre-
sente durante todo el año.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

cn O Ts

Género CYMATOPLEURA W. Smith

1. Cymatopleura solea (Bréb.) W. Smith var. solea
Fig: 181

Smith, W., Ann. Mag. Nat. Hist., 1(2): 12, Lám. 3, fig. 9 (1851),

Valvas panduriformes, alargadas, con extremos cuneados. Cos-
tillas marginales cortas, 8-9 en 10 u. Largo 128-130 u; ancho 25-27 u.

Taxon común en aguas dulces y salobres, tolerante a aguas
contaminadas.

Fue encontrada solamente en el Río Andalién y Río Bío-Bío du-
rante verano y otoño.

Distribución conocida para Chile: Puerto Montt (Hustedt in
Schmidt, Atlas, 1911); Río Baguales y sus afluentes, Posa Kark, Po-
sa Chico, Arroyo junto a Laguna Blanca, Río Tres Pasos (Muller,
1909); Trípoli de Calama (Frenguelli, 1930); Trípoli de San Pedro de
Atacama (Frenguelli, 1934); Bahía de Valparaíso (Krasske, 1941);
A67 km de Pta. Arenas, Cabo Froward (Krasske, 1949); Tierra del
Fuego (Cleve-Euler, 1948); Lago Roca (Thomasson, 1955); Lago Vi-
llarrica, L. Quillehue, L. Calafquén (Thomasson, 1963); Laguna próxi-
ma a la cordillera de Paine (Asprey et al., 1964); Santiago y al-
rededores (Negrete, 1964); Lago Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971);
Estero Lenga (Rivera, en Rivera et al., 1973).

Género SURIRELLA Turpin

Clave para los taxa de Surirella.

ESrapiealtisopalet. ADS. MEVA De OO e A 2
Dijes apical eteropolen.. arios Mulorins. docr trte. CO pOa 4
2Gestllas Hen 10M 1. (7) S. ovata var. smith
Zi Costillas: 2-3xEn OA Ade dat DERE reseca e
3. Valvas linear-lanceoladas; 140-155 u de largo ...cccooaaacocacancnoocannones

EE Mes e to errar Dina LA (1) S. biseriata
2 .¡Valyas, linear:elípticas; 87-90. 1u-de largo: s......oopdcu aid

PEO. YE OTE DINA AMAN? or MO DEA (2) S. pseudolinearis
AS O A A A o o
Ls Mas EN O AA e IAN 8
5. Valvas lineares, levemente contraídas en la parte media ......

PO A CENT RATAS (4) S. ovalis var. pinnata
bu Walvasioyales: ieval-elíplicas data
CuValvas 600. deidad iio (3) S. ovalis
O. Melvasiez cdi ASCO E ese ed OS 7
Losas molares maria. da Lal (5) S. ovalis var. salina
7. Costillas débiles, especialmente hacia el centro de la valva

AN de O CU A (6) S. ovata

8. Costillas cortas, dejando un gran espacio hialino central .....
PROC La e de A e e e ds (8) S. guatimalensis

8. Costillas alcanzando la línea media de la valva ................. 9

9. En la línea media de la valva existe una carena saliente
proamsta de dientes aniones (9) S. tenera var. nervosa

DTU aYas. sin Tal COTO callo: (10) S. robusta var. splendida

1. Surirella biseriata Bréb. var. biseriata
tig.» 134

Brebisson, A., in Brebisson 4 Godey, Consir. Diat., p. 53, Lám. 7
(1838).

Valvas isopolares, linear-llanceoladas, con extremos obtusos.
Costillas robustas, 2.5-3 en 10 u, paralelas en la parte media y ra-
diales en los extremos. Espacio hialino medio nítido. Largo 140-155 u.

Fue encontrado esporádicamente en la mayoría de los lugares
estudiados: Río Andalién, Río Bío-Bío, Laguna Pineda, Arroyo Leo-
nera y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Lago Fagnano (Thomasson,
1955); Lago Quillehue (Asprey et al., 1964); Laguna Chica de San
Pedro (Rivera, 1970).

2. Surirella pseudolinearis Krasske var. pseudolinearis
Figp-139

Krasske G., Arch. Hydrobiol., 35(3): 413, Lám. 12, fig. 23 (1939).

Valvas isopolares, linear-elípticas con extremos redondeados.
Costillas anchas, 2-2.5 en 10 u, paralelas en la parte media y ra-
diales hacia los extremos. Largo 87-90 u.

Este taxon, descrito por Krasske para el sur de Chile, fue en-
contrado exclusivamente en el Arroyo Leonera durante verano y
otoño.

Distribución conocida para Chile: Puyuhuapi, Calbuco, Isla Po-
luqui, Lago Risopatrón, Afluente del Lago Risopatrón, Río Pascua
(Krasske, 1939); Tierra del Fuego (Cleve-Euler, 1848); Al S.W. de
Bahía Inútil, Río Alerce, Isla Dawson (Krasske, 1949).

3. Surirella ovalis Bréb. var. ovalis
Fig. 134
Brebisson in Kutzing, F. T., Bacill., p. 61 (1844).

Valvas ampliamente ovales con el extremo inferior algo agudo.
Costillas. cortas, marginales, radiales, 5-6 en 10 u. Estrías finas, 16
en 10 u. Largo 60.5 u.

dos

Taxon de aguas dulces y salobres. Un solo frústulo encontrado
en el Río Bío-Bío.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de San Pedro de Ata-
cama (Frenguelli, 1934); Lago General Carrera, Mallín Chileno
(Krasske, 1949).

4. Surirella ovalis var. pinnata (W. Sm.) Van Heurck
Fiá, 135

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belg., p. 189, Lám. 73, fig. 13 (1881).

Syn.: S. panduriformis W.Sm.; S. pinnata W.Sm.

Valvas lineares, algo contraídas en la parte media y con ex-
tremos ampliamente redondeados. Costillas paralelas en la parte
media y radiales en los extremos, 7-8 en 10 u. Espacio hialino medio
nítido, linear. Largo 36.5 u.

Un solo frústulo encontrado en material del Río Bío-Bío. El tipo
N* 429 de Van Heurck para la S. ovalis var. pinnata es ligeramen-
te diferente a nuestro ejemplar por presentar un extremo más agu-
do. Sin embargo la ilustración de Boyer (1916, Diat. Philadelphia,
36/6) para la S. panduriformis es exacta a nuestro ejemplar.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

5. Surirella ovalis var. salina (W. Sm.) Van Heurck
Ha. 136

Van Heurck, H., Treat., p. 373, Lám. 13, fig. 589 (1896).

Valvas oval-elípticas. Costillas 7-8 en 10 u, dejando un amplio
espacio hialino medio, lanceolado. Largo 21-23 u.

Nuevamente el número de costillas fue superior al señalado
por diversos autores. Rivera (1974, p. 72), indicó esta característica
en material de Coquimbo. Los escasos frústulos observados provie-
nen del Río Bío-Bío.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Coquimbo (Rivera,
1974).

6. Surirella ovata Kutzing var. ovata
Fue señalada para el Estero Lenga por Rivera, en Rivera et al.,
1973.

7. Surirella ovata var. smithii Cleve-Euler
Fig. 137
Cleve-Euler, A., Sv. Vet.-akad. Handl., 3(3): 123, fig. 1566 m (1952).

Valvas isopolares, linear a linear-llanceoladas con extremos cla-
ramente producidos, rostrados. Costillas 7 en 10 u, dejando un es-
pacio hialino central linear, más o menos ancho. Largo 24-31 u.

1097

Taxon bastante común en el material estudiado, presente espo-
rádicamente en el Río Andalién, Río Bío-Bío, Laguna Pineda, Arroyo
Leonera y Laguna Lo Méndez.

Distribución conocida para Chile: Estero Lenga (Rivera, en Ri-
vera et al., 1973, y Rivera 1974); Bahía de Dichato, Isla Santa Ma-
ría (Rivera, 1974).

8. Surirella guatimalensis Ehr. var. guatimalensis
Fig. 136

Ehrenberg, C.G., Mikrogeol., Lám. 33, fig. 7 (1854).

Valvas ovales con cortas costillas marginales, radiales, 2.5-3
en 10 u, ausentes en el extremo más redondeado de la valva. Largo
160-175 u.

Taxon de aguas dulces descrito por Ehrenberg para Guatemala
y señalado hasta el momento sólo para América.

Fue encontrado en muestras del Río Bío-Bío, Arroyo Leonera
y Laguna La Posada.

Distribución conocida para Chile: Trípoli en Isla Cailín, Trípoli
en Puyehue (Frenguelli, 1935); Lago Llanquihue, Calbuco, Isla Po-
lugui, Provincia de Aysén al interior del Fiordo de Puyuhuapi
(Krasske, 1939); Isla Dawson, Al S.W. de Bahía Inútil, Cabo Froward,
Monte Tronador (Krasske, 1949); Lago Roca, Lago Fagnano, L. Ri-
ñihue, (Thomasson, 1955); Lago Llanquihue, L. Villarrica, L. Pichi-
lafquén, L. Calafquén, L. Pellaifa (Thomasson, 1963); Laguna Chica
de San Pedro (Thomasson, 1963 y Rivera, 1970); Estero Lenga (Ri-
vera, en Rivera et al., 1973).

9. Surirella tenera Greg. var. nervosa Schmidt
Fig. 139
Schmidt, Atlas, Lám. 23, fig. 15-17 (1885).

Valvas heteropolares, ovales. Espacio hialino central nítido, le-
vemente lanceolado, llevando una especie de carena provista de
dientes irregularmente espaciados. Costillas anchas, 1-2 en 10 u.
Largo 130-135 u.

Fue encontrado durante verano y otoño en el Río Andalién, Río
Bío-Bío y Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Lago Llanquihue, 40 km al
norte del puerto de Puyuhuapi (Krasske, 1939).

10. Surirella robusta Ehr. var. splendida (Ehr.) Van Heurck
Fig. 140

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belg., p. 187 (1881).

Valvas ovales con un extremo ampliamente redondeado y el
otro agudo-redondeado. Costillas anchas, 1.5-1.7 en 10 u. Espacio
central linear, muy angosto. Largo 17(+180 u.

83 —

Taxon de aguas dulces y salobres. Fue encontrada esporádica-
mente en el Río Bío-Bío, Laguna Pineda y Arroyo Leonera.

Distribución conocida para Chile: Calbuco, Provincia de Aysén
al interior del Fiordo de Puyuhuapi (Krasske, 1939); Mallín Chileno
(Krasske, 1949); Santiago y alrededores (Negrete, 1964); Laguna Chi-
ca de San Pedro (Rivera, 1970); Estero Lenga (Rivera, en Rivera
et al., 1973).

BIBLIOGRAFIA GENERAL

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FIG. 2. RIO ANDALIEN , TEMPERATURA SUPERFICIAL DEL AGUA.

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FIG. 4. LAGUNA PINEDA , TEMPERATURA SUPERFICIAL DEL ASUA,

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DEL AGUA.

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FIG. 5. ARROYO LEONERA , TEMPERATURA SUPERFICIAL DEL AGUA,

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FI0. 7. LAGUNA LO MENDEZ , TEMPERATURA SUPERFICIAL
DEL AGUA,

Fig. 8— Melosira granulata (Ehr.) Ralís.
9.— Melosira varians Agardh.
10.— Cyclotella meneghiniana Kutzing.

11—Cyclotella stelligera (Cleve € Grunow) V. Heurck
var. major var. nova.

12.— Asterionella formosa Hass. var. gracillima (Hantz.)
Grunow.

13— Ceratoneis arcus (Ehr.) Kutzing.

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Fig:

14— Diatoma hiemale (Lyngb.) Heib. var quadratum (Kutz.)
Ross.

15.— Diatoma tenue Agardh.
16.— Fragilaria vaucheriae (Kutz.) Petersen.

17. — Fragilaria construens (Ehr.) Grun. var. exigua (W. Sm.)
Schulz.

18.— Fragilaria construens (Ehr.) Grun. var. venter (Ehr.)
Grunow.

19.— Fragilaria pinnata Ehrenberg.

20.— Meridion circulare (Grev.) Ag. var. constricta (Ralís)
V. Heurck.

21— Opephora martyi Heribaud.

22— Plagiogramma interruptum (Greg.) Ralfs.

2409 —

22

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Fig. 23.— Synedra socia Wallace.
24. — Synedra pulchella Ralís ex Kutzing var. lacerata Hustedt.
25.— Synedra ulna (Nitz.) Ehrenberg.
26.— Synedra ulna var. danica (Kutz.) V. Heurck.

27. — Synedra ulna var. oryrhynchus (Kutz.) V. Heurck f.
mediocontracta (For.) Hustedt.

28.— Synedra parasitica (W. Sm.) Hustedt var. subconstricta
(Grev.) Hustedt.

29.— Synedra acus Kutzing.

30.— Synedra radians Kutzing.

NC

Fig. 31.— Eunotia pectinalis var. minor (Kutz.) Rabenhorst.
32.— Eunotia pectinalis var. undulata (Ralís) Rabenhorst.
33.— Eunotia major (W. Sm.) Rabh. var asiatica Skvortzow.
34— Eunotia sudetica O. Muller.

35.— Eunotia flexuosa (Bréb.) Kutz. var. linearis Okuno.

36— Eunotia fallax Cl. var. gracillima Krass. £ densistriata
Gonz. « Gandhi.

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Fig. 37.— Achnanthes brevipes Agardh.
38-39.— Achnanthes lanceolata var. dubia Grunow.
40-41.— Achnanthes pinnata Hustedt.
42.— Achnanthes hungarica (Grunow) Grunow.
43.— Cocconeis placentula Ehr. var. euglypta (Ehr.) Grunow.

44. —Rhotcosphenia curvata (Kutz.) Grun. ex Rabenhorst.

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Fig. 45.— Diploneis subovalis Cleve.

46.— Frustulia rhomboides (Ehr.) De Toni var. amphipleu-
roides (Grun.) Cleve.

47 —Frustulia vulgaris (Thw.) De Toni.
48 — Frustulia patrick sp. nova.

49 — Amphapleura indheimeri var. neotropica Frenguelli.

08

Fig. 50.— Gyrosigma eximioides sp. nova.
51.— Gyrosigma obscurum (W. Sm.) Griff. 4 Henífrey.

52— Gyrosigma spenceri (Quick.) Griff. € Hentrey.

— 102

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— 101 —

Fig. 53.— Stauroneis anceps Ehrenberg.
54.— Stauroneis anceps tf gracilis Rabenhorst.
55.— Stauroneis turfosa Tarn. á Jit. var. reimeri var. nova

56.— Stauroneis phoenicenteron (Nitz.) Ehr. var. gracilis
(Ehr.) Hustedt.

— 102 —

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— 103 —

Fig. 57.— Navicula
Grunow.

58— Navicula
59.— Navicula
60.— Navicula
61.— Navicula

62— Navicula

pupula Kutz. var. rectangularis (Greg.)

cuspidata (Kutz.) Kutzing.

cuspidata var. heribaudi Perag. €« Heribaud.
mutica Kutz. var. tropica Hustedt.

mutica var. undulata (Hilse) Grunow.

capitata Ehr. var. hungarica (Grun.) Ross.

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— 105 —

Fig. 63.— Navicula decussis Ostrup.

64— Navicula salinarum Grun. var. intermedia (Grun.)
Cleve.

65.— Navicula rhynchocephala Kutzing.

66.— Navicula viridula var. avenacea (Bréb. ex Grunow) V.
Heurck.

67 — Navicula viridula var. rostellata (Kutz.) Cleve.

68.— Navicula anglica Ralís var. subsalsa (Grun.) Cleve.

— 107 —

Fig. 69.— Navicula effrenata Krasske.
70.— Navicula lateropunctata Wallace.
71—Navicula simula Patrick.
72.— Navicula lapidosa Krasske.

73.— Navicula radiosa Kutzing.

— 108 —

— 109 —

Fig. 74— Neidium bisulcatum var. baicalense (Skv. 4 Meyer)
Reimer.

75.— Neidium magellanicum Cleve.
76— Neidium iridis (Ehr.) Cleve.

77—Neidium iridis var. ampliatum (Ehr.) Cleve.

— 110 —

-— 111 —

Fig. 78.— Pinnularia acrosphaeria W. Smith.

79— Pinnularia pinedana sp. nova, Rafe dilatada cerca de
los extremos distales.

80.— Pinnularia pinedana sp. nova. Rafe no dilatada.

81.— Pinnularia pinedana var. attenuata var. nova.

— 112 —

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—113—

Fig. 82— Pinnularia brevicostata Cl. var. intermedia Manguin Í.
cuneata f. nova.

83.— Pinnularia brevicostata var. sumatrana Hustedt.
84 — Pinnularia viridis (Nitz.) Ehrenberg.

85.— Pinnularia viridis var. intermedia Cleve.

86.— Pinnularia major (Kutz.) Rabh. var. linearis Cleve.

87.— Pinnularia borealis Ehrenberg.

— 114 —

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— 115 —

Fig. 88.— Pinnularia tropica Hust. var. densestriata var. nova.
89.— Pinnularia brebissonti var. diminuta (Grun.) Cleve.
90.— Pinnularia dactylus Ehrenberg.

91.— Pinnularia termitina (Ehr.) Patrick.
92.— Pinnularia biceps Gregory.

93.— Pinnularia substomatophora Hustedt.

— 116 —

— 117 —

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Fig. 94 — Amphora splendida sp. nova.
95.— Cymbella ventricosa Kutzing.
9.— Cymbella postrata (Berk.) Cleve.
97— Cymbella naviculiformis Auerswald.
98.— Cymbella gracilis (Rabh.) Cleve.
99— Cymbella sinuata Gregory.

100.— Cymbella hauciii V. Heurck var. chilensis var. nova.

— 118 —

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— 119 —

Fig. 101-102.— Cymbella affinis Kutzing.
103.— Cymbella tumida (Bréb.) V. Heurck.
104.— Cymbella tumida tf. major Rich.

105.— Cymbella tumida var. australica (Schm.) Hust. £
rostrata f. nova.

106.— Cymbella cymbiformis Agardh.

— 120 —

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Fig.

107.— Gomphonema
108.— Gomphonema
109.— Gomphonema
110.— Gomphonema
111.— Gomphonema
112— Gomphonz=ma
113.— Gomphonema
114— Gomphonema
115.— Gomphonema
116.— Gomphonema

117.— Gomphonema

constrictum Ehrenbero.

acuminatum Ehrenberg.

turris Ehrenberg.

martini Fricke.

herculeanum Ehrenberg.

montanum Schumann.

montanum var. subclavatum Grunow.
parvulum Kutzing.

parvulum var. micropus (Kutz.) Cleve.
hebridense Gregory.

gracile Ehrenberg.

— 122 —

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Fig. 118— Epithemia zebra (Ehr.) Kutzing.

119—Rhopalodía gibba var. ventricosa (Kutz.) Perag. á
Perag.

120.— Rhopalodia musculus (Kutz.) O. Muller.

121— Hantzschia amphioxys var. chilensis var. nova.
122— Hantzschia elongata (Hantz.) Grunow.

123.— Nitzschia acicularioides Usteat.

124— Nitzschia thermalis (Ehr.) Auersw. var minor Hilse.
125.— Nitzschia kutzingiana Hilse.

126.— Nitzschia amphibia Grun. var. umbrosa Cleve-Euler.
127 —Nitzschia dissipata (Kutz.) Grunow.

128— Nitzschia linearis (Ag.) Wi Smith.

— 124 —

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— 123 —

Fig. 129-130— Stenopterobia intermedia (Lewis) Fricke.
131— Cymatopleura solea (Bréb.) W. Smith.
132.— Surirella biseriata Brébisson.

133.— Surtrella pseudolinearis Krasske.

134 — Surtrella ovalis Brébisson.

— 126 —

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— 127 —

Fig

135.— Surtrella
136.— Surtrella
137.— Surirella
138.— Surirella
139.— Surtrella

140.— Surirella

ovalis Bréb. var. pinnata (W. Sm.) V. Heurck.
guatimalensis Ehrenberg.

ovata var. smithii Cleve-Euler.

ovalis var. salina (W. Sm.) V. Heurck.
tenera Greg. var. nervosa Schmidt.

robusta Ehr. var. splendida (Ehr.) V. Heurck.

— 128 —

— 129 —

INDICE DE TAXA

Achnanthes biasolettiana, 33

Achnanthes brevipes, 31

Achnanthes hungarica, 32

Achnanthes lanceolata, 31

Achnanthes lenceolata var. dubia, 31
Achnanthes lanceolata var. dubia, 31
Achnanthes pinnata, 31

Amphipleura lindheimer:, 36

Amphipleura lindheimeri var. neotropica, 36
Amphora splendida sp. nova, 6l
Asterionella formosa var. gracillima, 18
Ceratoneis arcus, 18

Ceratoneis arcus var. amphioxys, 19
Ceratoneis arcus var. linearis, 19
Cocconeis placentula var. euglypta, 33
Cocconeis thumensis, 33

Cyclotella meneghiniana, 17

Cyclotella stelligera, 17

Cyclotella stelligera var. major var. nova, 17
Cymatopleura solea, 80

Cymbella affinis, 66

Cymbella cymbiformis, 68

Cymbella gracilis, 64

Cymbella hauckii var. chilensis var. nova, 65
Cymbella lanceolata, 68

Cymbella naviculiformis, 65

Cymbella prostrata, 63

Cymbella sinuata, 64

Cymbella tumida, 67

Cymbella tumida í major, 67

Cymbella tumida var. australica í rostrata f nova, 67

Cymbella ventricosa, 62

— 131 —

Diatoma hiemale

var.

Diatoma tenue, 20
Diploneis subovalis, 34
Epithemia sorex, 74
Epithemia zebra, 74

Eunotia
Eunotia
Eunotia
Eunotia
Eunotia
Eunotia

quadratum, 19

linearis, 29
asiatica, 28
pectinalis var. minor, 28
pectinalis var. undulata, 28
sudetica, 29

Fragilaria capucina var. lanceolata, 22
Fragilaria construens var. exigua, 21
Fragilaria construens var. venter, 21
Fragilaria pinnata, 21

Fragilaria vaucheriae, 20

Frustulia patrickíi sp. nova, 33

Frustulia
Frustulia
Frustulia
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gomphonema
Gyrosigma

vulgaris, 36

rhomboides var. amphipleuroides, 35
rhombordes var.

capitata, 35

acuminatum, 70
constrictum, 69

constrictum v
gracile, 73

ar.

hebridense, 73

herculeanum,
martint, 71
montanum, 71

montanum var. subclavatum, 72

parvulum, 72

71

capitatum, 70

parvulum var. micropus, 73

turris, 70

eximioides sp. nova, 37

Gyrosigma
Gyrosigma
Hantzschia
Hantzschia
Hantzschia
Hantzschia
Melosira
Melosira
Melosira
Melosira
Meridion
Navicula

obscurum, 38
spencer:, 38

amphioxys, 76

amphioxys Í.

amphioxrys var.

elongata, 76

distans, 16
granulata, 15
italica, 16
varians, 16
circulare var.
anglica var. subsalsa, 47

capitata, 76

constricta, 22

e, lr

chilensis var.

nova,

fallaz var. gracillima í. densistriata, 30
flexuosa var.
major var.

76

Navicula capitata var. hungarica, 44
Navicula cuspidata, 43

Navicula cuspidata var. heribaudi, 43
Navicula decussis, 45

Navicula effrenata, 47

Navicula lapidosa, 49

Navicula lateropunctata, 48

Navicula mutica var. tropica, 44
Navicula mutica var. undulata, 44
Navicula pupula var. rectangularis, 42
Navicula radiosa, 47

Navicula rhynchocephala, 45

Navicula salinarum var. intermedia, 45
Navicula simula, 48

Navicula viridula var. avenacea, 46
Navicula viridula var. rostellata, 46
Neidium bisulcatum var. baicalense, 49
Neidium iridis, 50

Neidium iridis var. ampliatum, 50
Neidium magellanicum, 50

Nitzschia acicularioides, 77

Nitzschia amphibia var. umbrosa, 78
Nitzschia dissipata, 78

Nitzschia kutzingiana, 78

Nitzschia levidensis, 79

Nitzschia linearis, 79

Nitzschia obtusa var. scalpelliformis, 79
Nitzschia thermalis var. minor, 78
Opephora martyi, 22

Pinnularia abaujensis var. linearis, 60
Pinnularia abaujensis var. subundulata, 6l
Pinnularia acrosphaeria, 52

Pinnularia biceps, 59

Pinnularia borealis, 56

Pinnularia braunú var. amphicephala, 59
Pinnularia brebissonii, 60

Pinnularia brebissoní var. diminuta, 60
Pinnularia brevicostata var. intermedia f. cuneata f. nova, 55
Pinnularia brevicostata var. sumatrana, 55
Pinnularía dactylus, 58

Pinnularia divergens, 60

Pinnularia latevittata f —medioconstricta, 59
Pinnularia major var. linearis, 57
Pinnularia major var. transversa, 58
Pinnularia nobilis, 57

— 133—

Pinnularia
Pinnularia
Pinnularia
Pinnularia
Pinnularia
Pinnularia
Pinnularia

59

56

pinedana sp. nova, 53

pinedana var. attenuata var. nova, 54
substomatophora, 60
termitina,
tropica var.
viridis,
viridis var. intermedia, 57

densestriata var.

Plagiogramma interruptum, 23
Rhoicosphenia curvata, 33

Rhopalodia gibba var.

Rhopalodia musculus, 75

ventricosa

,

nova, 58

75

Stauroneis anceps, 39

Stauroneis anceps í. gracilis, 39

Stauroneis anceps f. linearis, 40

Stauroneis phoenicenteron í. gracilis, 41
Stauroneis turfosa var. reimeri var. nova, 40

Stenopterobia intermedia, 79
biseriata, 8l
guatimalensis, 83

Surtirella
Surirella
Surirella
Surtirella
Surirella
Surirella
Surirella
Surirella
Surirella
Surirella
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra
Synedra

ovalis, 8l

ovalis var. pinnata, 82
ovalis var. salina, 82

ovata,

82
ovata var.

smithiz,

pseudolinearis, 81
robusta var. splendida, 83

tenera var.

acus, 26

NEFVOSA,

82

83

parasitica var. subconstricta, 26
pulchella, 24

pulchella var.
radians, 27

socia, 24
ulna, 24
ulna
ulna
ulna
ulna

var.
var.
var.
var.

— 134 —

lacerata,

aequalis, 26
danica, 25
oxyrhynchus Í.
subaequalis, 26

mediocontracta, 25

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR
EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE LA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION EL DIA
26 DE DICIEMBRE DE 1974

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una
Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que
los números se publican tan pronto como la Comisión
Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

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ENSITLEUTO DEBO LOGIA

BOTANICA ENRI N?2 29

MORFOLOGIA DE LOS GRANOS DE POLEN DE
HESPEROMANNIA GRAY Y MOQUINIA DC.
(COMPOSITAE - MUTISIEAE). ESTUDIO
COMPARATIVO CON GENEROS AFINES

CLODOMIRO MARTICORENA y OSCAR PARRA

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UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile y

INSTITUTO “DE BIOLOGIA
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CHILE
DIRECTOR : Mario Alarcón A.
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EDITORES EJECUTIVOS:

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GAYANA

ENSTITUTO" DB" BLOEOGIA

BOTANICA HIT N?9 29

MORFOLOGIA DE LOS GRANOS DE POLEN DE
HESPEROMANNIA GRAY Y MOQUINIA DC.
(COMPOSITAE - MUTISIEAE). ESTUDIO
COMPARATIVO CON GENEROS AFINES

por

CLODOMIRO MARTICORENA y OSCAR PARRA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente
conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (18548)

MORFOLOGIA DE LOS GRANOS DE POLEN DE
HESPEROMANNIA GRAY Y MOQUINIA DC.
(COMPOSITAE - MUTISIEAE). ESTUDIO
COMPARATIVO CON GENEROS AFINES

por

CLODOMIRO MARTICORENA (*) y OSCAR PARRA (**)

RESUMEN
La morfología de los granos de polen de Hesperomannia Gray y Moquinia
DC. (Compositae-Mutisieae), comparada con la de géneros afines, demuestra que
estos dos géneros son palinológicamente únicos dentro de la tribu.

'AUBIS EL BLANC E

The pollen morphology of Hesperomannia Gray and Moquinia DC.
(Compositae-Mutisieae), compared with that of related genera, shows that these
two genera are palynologically isolated within the tribe.

INTRODUCCION

La morfología de los granos de polen de Compositae-Mutisieae es de gran
interés y puede aportar importantes antecedentes de parentezco que permiten
un ordenamiento más racional de los géneros dentro de ella. Durante la pre-
paración de un estudio palinológico general hemos encontrado algunos tipos
morfológicos que nos ha parecido conveniente dar a conocer, en el caso pre-
sente los de Hesperomannia y Moquinia, géneros endémicos de Hawaii y Bra-
sil, respectivamente. También se ha hecho un estudio comparativo con el resto

de los géneros de la tribu, especialmente con la morfología de los géneros con-
siderados más afines.

(+), (**) Departamento de Botánica, Instituto de Biología, Universidad de Concepción.

3

MATERIALES Y METODOS

El material se preparó mediante el método de acetolisis y se montó pos-
teriormente en gelatina-glicerina (Erdtman 1960). Para hacer los cortes el ma-
terial acetolizado se incluyó siguiendo la técnica de Leins (Leins 1968, Parra y
Marticorena 1972). Los granos se cortaron de m/m 0.5 y de grosor en un micró-
tomo AO Spencer 821 con aditamiento para cortes ultrafinos, con cuchillo de
vidrio (Knife-Maker LKB). Las medidas están dadas en micrones.

La terminología usada es la de Erdtman (1952, 1960, 1969) y Stix (1960).

El material polínico se guarda en la Palinoteca del Departamento de
Botánica de la Universidad de Concepción.

HESPEROMANNIA Gray

Hesperomannia fue creado por A. Gray en 1863, con una sola especie,
H. arborescens. Constituye un género endémico de las Islas Hawaii, y según
Carlquist (1957b) comprende tres especies arborescentes muy emparentadas,
algunas de ellas posiblemente extinguidas. Dentro del archipiélago hawaliano
cada una de ellas y las subespecies en que se dividen presentan un marcado
endemismo; la distribución actual es la siguiente:

. arborescens Gray subsp. arborescens: Lanai (posiblemente extinguida).
. arborescens Gray subsp. bushiana (Deg.) Carlq.; Oahu.
. arborescens Gray subsp. swezeyi (Deg.) Carlq.: Oahu.

. arbuscula Hillebr. subsp. oahuensis (Hillebr.) Carlq.: Oahu, Mt. Kaala.

H
H
dl
H. arbuscula Hillebr. subsp. arbuscula: West Maui (posiblemente extinguida).
H
H. lydgater Forbes: Kauai.

Gray, al describir el género, estimó que por las características florales
debía pertenecer a las Flotovieae en el sentido de Weddell, estando relacio-
nado con Chuquigara y Doniophyton, presentando además mucha semejanza
con Stifftia y Anastraphia (= Gochnatia, seg. Cabrera 1971). Esto mismo es
aceptado por Brigham (1868, cit. por Stone 1967).

Bentham (1873a) en su sistema coloca a Hesperomannia vecino a Wunder-
lichia, Leucomeris (= Gochnatia, seg. Cabrera, op. cit.) Gochnatia y Moquinia.

El mismo autor (1873b) dice que es un género del grupo de Gochnatia,
relacionado con Stifftia por los capítulos grandes y el tipo de aquenio y
pappus, pero que se diferencia en el invólucro y estilo; también lo relaciona
con Wunderlichia.

Baillon (1882) dice que por las ramas del estilo cortas y poco divergentes,
junto con Wunderlichia (con duda) y Aimsliaea, es lo que más se acerca a
Chuquiraga. Posteriormente Hoffmann (1893), basado en los pelos colectores

4

del estigma, coloca a Hesperomannta en las Mutisieae-Gochnatinae, junto a
Wartonia, Macroclinidium, Pertya, Berardia y Myripnois; por estas caracte-
rísticas también supone que presenta relaciones con Ainmslivaea (Mutisieae-
Mutisinae). De estos géneros, Wartonia y Berardia actualmente se consideran
como Cynareae.

Jeffrey (1967) divide a la tribu en 12 series, incluyendo en Pertya-Series
a Moquinia, Hesperomannia, Macroclinidium, Pertya y Myripnots. Los carac-
teres comunes que toma en cuenta para esta agrupación son las ramas del
estilo largas y los estilos ásperamente pilosos.

Los granos de polen de Hesperomannta han sido estudiados por Selling
(1947), siendo su descripción la única que hasta ahora existe. La especie
descrita por Selling es H. swezeyi Deg. (= H. arborescens subsp. swezeyi) y su
descripción se basa en la observación de granos enteros. Comparando sus
observaciones con lo que hasta esa época se conocía de la morfología de los
granos de polen de Mutisieae, estima que se trata de un nuevo tipo morfo-
lógico que debe agregarse a los encontrados por Wodehouse en sus numerosos
trabajos sobre granos de polen de Compositae, llamándole especialmente la
atención el tipo de espinas.

En el presente estudio se ha hecho un examen de los granos de polen
basado especialmente en la morfología general externa y en microcortes para
interpretar debidamente la exina. Al mismo tiempo, se han comparado con
los demás géneros de Mutisieae, salvo con Chimantaea, Eurydochus y Guaicaia,
de los que no contamos con material, De estos tres, Chimantaea ha sido estu-
diado por Carlquist (1957a), y su morfología es diferente de Hesperomannia.
Es muy poco probable que los dos restantes presenten características semejantes
a este género. En el resto de los géneros no existe ninguno que tenga espinas
tan notables (salvo en Moquinta, como se discutirá más adelante) y una
estructura de la exina tan particular. La morfología tampoco es homologable
a los tipos descritos por Stix (1960) para Compositae.

Los caracteres principales de los granos de polen de los géneros que se
han estimado afines a Hesperomannia, especialmente en lo que respecta a
la estructura de la exina, son los siguientes:

AINSLTAEA

La mayoría 3-colpados; 3-colporados en A. acerifolia, A. cordifolia y A.
dissecta. Sexina formada por tectum e infratectum. Tectum baculado, general-
mente más grueso que el infratectum. Membrana terminal punctada (siempre?),
con espínulas de base ancha. Báculos raramente ramificados. Membrana de
soporte evidente (difusa en A. apiculata). Infratectum con báculos ramificados.
Nexina sólo formada por nexina 1 (foot layer), caso raro en Mutisieae.

5

MATERIAL: ESTUDIADO:

A. acerifolia Sch. Bip. Japón: M. Furuse, 14-1X-1957 (S).

. angustifolia Hook. f. et Thoms. India: J. D. Hooker £ V. Thomson (S).

. apiculata Sch. Bip. Japón: “TT. Seki 1265 (HIRO); S. Kobayashi 15119 (S).

. Aptera DC. India: M. B. Raizada, 20-1V-1937 (S).

. cordifolia Franch. et Savat. Japón: M. Furuse, 7-X-1956 (S).

. dissecta Franch. et Savat. Japón: H. Deguchi 4164 (HIRO).

. fragans Champ. ex Benth. Hong Kong: Y. S. Lan 1573 (HK).

A. hypoleuca Diels. China: Limpricht 1251 (S).

A. macroclinidioides Hayata. Taiwan: Gressit 195 (S). China: A. N. Steward
et. al.. 418, (S):

. pertyoides Franch. China: Handel-Mazzetti 551 (M); Delaway, 28-1-1889 (S).

A. pertyoides var. albotomentosa Beauv. China: Cavakric 19 (S).

A. pteropoda DC. India: Griffith 3331 (M); Hira Lal, 14-111-1954 (LWG 7787);

Kirat Ram, 28-IV-1932 (S).
A. triflora (Buch..Ham. ex D. Don) Druce. China: sin col. (PE).
A. yunnanensis Franch. China: Cavakric 20 (S).

SS

a

ANASTRAPHIA: (ver Gochnatia).

CHUQUIRAGA
3-colporados. Membrana terminal fina, espinulosa; el resto de la sexina
finamente baculado, sin diferenciación en tectum e intratectum; la mitad in-

terna de la sexina con material granuloso de relleno entre los báculos (Parra
y Marticorena 1972, Lám. 1, D-E).

MATERIAL ESTUDIADO:
Fuera del material citado en Parra y Marticorena (op. cit.) se estudió

el siguiente:

Ch. acanthophylla Wedd. Bolivia: K. Fiebrig 3009 (HBG).

Ch. aurea Skottsb. Argentina: N. Y. Aurelius, año 1912 (S); C. O'Donel 3743 (S).

Ch. avellanedae Lorentz. Argentina: A. L. Cabrera 20444 (CONC); R. Pérez-
Moreau £ B. Piccinini 3267 (CONC).

Ch. calchaquina Cabr. Argentina: T. Meyer 22415 (S).

Ch. erinacea Don. Argentina: P. Jórgensen s.n. (S); R. Pérez-Moreau 3006
(CONC).

Ch. hystrix Don. Argentina: A. Krapovickas 3669 (CONO).

Ch. insignis H. B. K. Ecuador: B. Maguire £ C. K. Maguire 61736 (S); F. Prieto

P-147 (S).

Ch. johnstoniú “Tovar. Perú: R. Ferreyra 6598 (USM).

Ch. jussieui J. F. Gmel. var. jussieui. Ecuador: R. Scolnik 1529 (S).

Ch. jussieui var. lancifolia (H. et B.) Koster. Bolivia: G. Mandon 1 (S).

6

Ch. kingii Ball. Argentina: C. Hogberg 9 (HBG); P. Dusén, 19-XI1-1904 (5).

Ch. longiflora Griseb. Bolivia: K. Fiebrig 3185 (S).

Ch. parviflora (Griseb.) Hieron. Bolivia: K. Fiebrig 2651 (HBG, S); J. Stein-
bach 8557 (5).

Ch. rosulata Gaspar. Argentina: A, L, Cabrera 18632 (5).

Ch. straminea Sand. Argentina: A. L. Cabrera 20574 (S); G. Dawson * H.
Schwabe 2194 (CONC).

DONIOPHYTON

Semejante a Chuquiraga. Material de relleno ausente o escaso (Parra y
Marticorena op. cit., lám. 1, A-C).

MATERIAL ESTUDIADO:
D. patagonicum (Phil.) Hieron. Argentina: S. Schajowskoy 153 (M); C. O'Donell
Z193 (5).

GOCHNATIA (incl. Anastraphia y Leucomeris)

Gochnatia presenta varios tipos de granos de polen y será objeto de un
estudio posterior. La siguiente descripción está basada en caracteres combi-
nados del material disponible.

3-colporados. Membrana terminal punctada o no. Espínulas de base ancha,
excepto en G. cubensis en la cual son cilíndricas y romas, pero sólo de hasta
2 u de altura. Tectum de m/m el mismo grosor o más grueso que el infra-
tectum, generalmente fina y densamente baculado (con báculos más gruesos
y separados en G. blanchetiana y G. floribunda), con una o dos capas; cuando
con una capa, con los báculos con engrosamiento central o no; cuando con
dos capas, con la capa externa con báculos con engrosamiento central o no,
dando el aspecto de tres capas. Infratectum con báculos ramificados.

MATERIAL ESTUDIADO:

G. amplexifolia (Gardn.) Cabr. Brasil: G. Martins Felippe 38 (SP, RB); E.
Pereira 2204 (RB); Brade *£ Aparicio 20498 (RB).

G. argentina (Cabr.) Cabr. Argentina: T. M. Pedersen 5345 (S).

G. argyrea (Dusén) Cabr. Brasil: P. Dusén 7211 (S); P. Dusén 4035 (Lecto-

typus: S).

. Attenuata (Britton) Jervis et Alain. Cuba: E. L. Ekman 5275-b (S).

. barrostí Cabr. Paraguay: Hassler 10535 (RB); M. Macedo 2496 (S).

. blanchetiana (DC.) Cabr. Brasil: H. S. Irwin et al. 14892 (S).

. boliviana Blake. Perú: P. C. Hutchison *£ J. K. Wright 5856 (S).

buchi (Urb.) Jiménez var. buchi. Haití: E. L. Ekman H-9280 (S).

cordata Less. var. cordata. Brasil: G. Malme 899 (S).

cordata var. mollissima Hassler. Paraguay: J. Jórgensen 4807 (S).

q

DONADAS

Non

¡PO!

e)

e)

QO0N0000

. cowellii (Britton) Jervis et Alain. Cuba: E. L. Ekman 16237 (S).
. cubensis (Carabia) Jervis et Alain. Cuba: E. L. Ekman 4747 (S).
. discoidea (Less.) Cabr. Brasil: Liitzelburg 154 (M); A. B. Joly 1082 (SP);

Markgraf 3466 (RB); E. Pereira 2145 (RB); E. Pereira 2214 (RB); G.
Malme 2417 (Typus de Seris rupestris Malme: S).

. floribunda Cabr. Brasil: Gardner 4806 (Isotypus: S).
. glutinosa (Don) Don ex H. et A. Argentina: A. Ragonese 237 (S); J.

Hunziker £ A. Calastremé 3227 (CONC).

. hypoleuca (DC.) A. Gray subsp. hypoleuca. México: E. Palmer 352 (S); I. M.

Johnston 7223 (S).

. tlicifolia Less. Bahamas, Nassau: Curtis 46 (M).

. mollissima (Malme) Cabr. Brasil: G. Malme 648 (Typus: S).

. montana (Britton) Jervis et Alain. Cuba: E. L. Ekman 16700 (S).

. orbiculata (Malme) Cabr. Brasil: A. C. Brade 5523 (S, SP); O. Handro

156 (SP); P. Dusén 9110 (S).

mm”

. palosanto Cabr. Bolivia: J. Steinbach 8577 (5).
. paniculata (Less.) Cabr. var. paniculata. Brasil: E. Warming 5-VII-1865 (S);

Regnell 111-805 (S).

. paniculata var. densicephala Cabr. Brasil: Lindberg 24 (S).
>. paniculata var. polycephala (Gardn.) Cabr. Brasil: Gardner 4809 (Isotypus:

S)); Gardner 4808 (Isotypus de Moquinia desertorum Gardn.: S).

. picardae (Urb.) Jiménez. Haití: E. L. Ekman H-5056 (S); E. L. Ekman

H-5385 (5).

. polymorpha (Less.) Cabr. subsp. polymorpha. Brasil: M. Kuhlmann 497

(SP); Blanchet 3251 (S).

. polymorpha subsp. ceanothifolia (Less.) Cabr. Brasil: L. Smith 11872 (RB);

E. L. Ekman 1041 (5).

. polymorpha subsp. floccosa Cabr. Brasil: F. Tamandaré £ A. C. Brade 6654

(SP); P. Dusén s.n., V-1914 (S); Regnell 11-175a (S).

. pulchra Cabr. Brasil: J. E. de Paula 98 (SP); A. Heimer s.n. (S).

. recurva (Britton) Jervis et Alain. Cuba: E. L. Ekman 15987 (S).

. rotundifolia Less. Brasil: O. Handro 157 (SP); A. C. Brade 5346 (S).

. sagraeana Jervis et Alain. Cuba: E. L. Ekman 13702 (S).

. shaferi (Britton) Jervis et Alain. Cuba: E. L. Ekman 9059 (S).

. sordida (Less.) Cabr. Brasil: P. Dusén 13083 (S).

. spectabilis (D. Don) Cabr. India: S. Kurz s.n. (M); Vishnavath Rushi 65 (S);

JS.

. tortuensis (Urb.) Jiménez. Haití: E.L. Ekman H-4034 (S); E. L. Ekman

H-3553 (5).

. velutina (Bong.) Cabr. Brasil: L. B. Smith £ R. Klein 14885 (LP).

LEUCOMERIS: (ver Gochnatia).

MACROCLINIDIUM

3-brevicolporados. Espinas prominentes (hasta de 5 y) de base ancha.
Tectum ligeramente más delgado que el infratectum, baculado. Membrana
terminal punctada. Báculos del tectum finos y densos, más gruesos en la mitad

distal, dando por resultado una zona más oscura. Infratectum con báculos
ramificados. Nexina 1 y 2 evidentes.

MATERIAL ESTUDIADO:

M. rigidulum (Miq.) Mak. Japón: Kirino 391 (M); M. Furuse s.n., 10-1X-1956
(S).

M. robustum Maxim. Japón: Maximowicz, año 1862 (M).

M. trilobum Mak. Japón: M. Togasi 1349 (S).

OBSERVACION: Macroclinidium es considerado sinónimo de Pertya por
algunos autores (p. ej. Ohwi 1965), siendo aceptado por otros (p. ej. Jeffrey
1967). Hemos preferido mantenerlo aparte ya que los granos de polen son
diferentes de los de Pertya.

MOQUINTA: (ver descripción más adelante).

Al relacionar Hesperomannia con Moquinia, los autores anteriores a
Cabrera (1969) lo han hecho tomando a este último género en el sentido de
De Candolle, es decir, formado por varias especies, que salvo M. racemosa,
deben pertenecer a Gochnatia.

MYRIPNOIS

3-colporados. Tectum de aspecto homogéneo o difusamente radial-estriado.
Membrana terminal con espínulas vestigiales. Infratectum de m/m el mismo
grosor que el tectum, baculado. Báculos simples o más raramente, ramificados.
Nexina 1 y 2.

MATERIAL ESTUDIADO:
M. dioica Bunge. China: H. Smith 5255 (S); C. Y. Chiao, 9-V-1929 (S).

PERTYA

3-colporados. Tectum e infratectum bien desarrollados. Membrana ter-
minal con espínulas de base ancha, continua (o con punctas muy pequeños ?)
o punctada. Tectum muy finamente baculado o con báculos m/m separados,
de una sola capa o a veces con dos zonas delimitadas por engrosamientos
en el centro de los báculos o la inferior difusa. Infratectum baculado, con
báculos simples o ramificados. Nexina 1 y 2, a veces la segunda muy reducida.

0

La morfología de los granos de Pertya es algo heterogénea; algunas espe-
cies presentan características típicas de Gochnatia, especialmente de las seccio-
nes Gochnatia y Discoseris; otras, por los báculos del tectum m/m separados
y la nexina 2 muy reducida, se asemejan a algunas especies de Ainsliaea.
MATERIAL ESTUDIADO:

P. discolor Rehder. China: H. Smith 5786 (S).

P. glabrescens Sch. Bip. Japón: M. Furuse, 3-1X-1956 (S).

P. phylicoides J. F. Jeffr. China: Handel-Mazzetti 1496 (S).

P. scandens (Thunb.) Sch. Bip. Japón: Murata 19177 (M); T. Seki, 3-X-1969

(HIRO); N. Maruyama £ K. Okamoto, 28-X-1950 (S).

P. sinensis Oliv. China: J. F. Rock 14588 (S).

STIFFTIA
3-colporados. Tectum del mismo grosor o algo más grueso que el infra-
tectum, finamente baculado, con una o dos zonas y en este caso la inferior
más difusa. Membrana terminal con espínulas de base ancha, finamente punc-
tada. Báculos de tectum simples, ramificados en $. paniculata. Infratectum
con báculos ramificados. Nexina 1 y 2.
La estructura es semejante a la de Gochnatia sect. Gochnatia y sect.
Discoseris; S. paniculata es semejante a Macroclinidium.
MATERIAL ESTUDIADO:
S. chrysantha Mikan. Brasil: P. L. do Sacramento s. n. (M); M. Kuhlmann
3788 (SP); F. C. Hoehne, 1-VI1-1920 (SP).
S. paniculata Maguire et Phelps. Venezuela: B. Maguire et al. 42478 (M).
S. parviflora (Leandro) Don. Brasil: E. Schwebel, X11-1917 (SP); J. G. Kuhl-
mann 380 (RB); Warming s.n. (S).
S. uniflora Ducke. Brasil: N. L. Silva, 9-1X-1968 (RB); E. Pereira 3218 (RB);
J. M. Pires et al. 50484 (S).

WUNDERLICHIA

3-colporados. Espínulas de base ancha. Membrana terminal evidente,
punctada. Tectum baculado; báculos simples, finos, m/m separados, los espa-
cios intermedios ocupados por un material difuso, a veces dispuesto en capas
que en el corte dan el aspecto de una malla muy tenue. Extremo distal de
los báculos engrosado, creando dos zomas; a veces los engrosamientos de
disposición y grosor irregular y entonces la delimitación en zonas no muy
marcada. Membrana de soporte m/m difusa. Infratectum de m/m el mismo
grosor que el tectum, baculado; báculos cortamente ramificados. Nexina 1 y 2.
MATERIAL ESTUDIADO:
W. crulsiana Taub. Brasil: Lútzelburg 1350 (M); H. S. Irwin et al. 9314 (S).
W. mirabilis Riedel ex Baker. Brasil: A. Macedo 3870 (S).
W. tomentosa Glaz. Brasil: Glaziou 21684 y 21685 (S).

10

BERARDIA Y WARIONIA

Los granos de polen de estas Cynareae tampoco se asemejan a los de
Hesperomannia.

MATERIAL ESTUDIADO:
Berardia subacaulis Vill. Francia: Merxmúller £ Zollitsch 26103 (M).

Warionia saharae Benth. et Cosson. Marruecos: L. Emberger, año 1932 (RAB);
E. K. Balls B-2530 (S).

Las principales diferencias de los géneros anteriormente descritos y del
resto de las Mutisieae con Hesperomannia son el tipo de espinas y la pre-
sencia de tectum bien desarrollado; no existe otro género con estructura de
la sexina semejante, y espinas con una relación alto/diámetro basal como las
de Hesperomannia sólo se encuentran en Moquinia.

Por último, la anatomía del leño de Hesperomannia ha sido estudiada
por Carlquist (1957c), quien al respecto dice que, junto con Cnicothamnus,
Gongylolepis, Lycoseris, Stenopadus y Stifftia, presenta una serie de caracteres
que considera relativamente primitivos. Los granos de polen de estos géneros
(Stifftia ya se trató anteriormente) tampoco indican relación con Hespero-
mannia, De ellos se estudió el siguiente material:

CNICOTHAMNUS

C. lorentziú Griseb, Argentina: D. Olea, 3-111-1945 (S); S. A. Pierotti 6604 (S).
Bolivia: Fabris £ Crisci 7409 (LP).

GONGYLOLEPIS

G. huachamacari Maguire subsp. neblinensis Maguire et Wurdack. Venezuela:
B. Maguire et al. 42276 (S).

G. martiana (Baker) Steyerm. et Cuatr. Colombia: R. E. Schultes £ 1. Cabrera
15033 (S).

G. paniculata Maguire et Phelps. Venezuela: B. Maguire et al. 42487 (M. S.).

LYCOSERIS
L. croccata (Bertol.) Blake. Guatemala: Molina £ Molina 25213 (S).
L. retroflexa Koster. Brasil: G. Hatschbach 21906 (S).

STENOPADUS

S. campestris Maguire et Wurdack. Colombia: Maguire, Wurdack £ Keith,
12-X-1957 (S).

11

HESPEROMANNIA

Granos de polen 3-colporados, subprolatos a esferoidal prolatos. Colpos
eon los extremos redondeados a agudos y márgenes suave e irregularmente
ondulados. Membrana colpal lisa. Ora lalongados, con margen poco visible,
no bien delimitados; extremos ecuatoriales de los ora agudos. Mesocolpios
convexos. Amb m/m circular.

Exina espinosa, más gruesa bajo las espinas que entre éstas. Tectum
densa y finamente punctado, reducido, formado sólo por los extremos m/m
capitados de las ramificaciones de los báculos del infratectum. Espinas m/m
agudas a romas, con la mitad proximal cilíndrica y la distal cónica, o cónicas
desde la base, con una cavidad pequeña, esférica o m/m alargada longitudinal-
mente cerca de la base. Infratectum baculado. Báculos del infratectum de
sección m/m circular, profusamente ramificados, más dilatados hacia la mitad
distal, gruesos; otros más delgados en menor número. Nexina claramente di-
ferenciada en nexina 1 y 2, ambas de m/m el mismo grosor.

OBSERVACIONES: La densidad de espinas varía; por ejemplo, un material
de H. arbuscula subsp. oahuensis (Carlquist NO 1910) tiene un número menor
de espinas que el resto de los ejemplares examinados del género; sin embargo,
la densidad parece variar en distintos ejemplares de una misma especie o
subespecie. También varía la forma de las espinas; por lo general la mitad
proximal es cilíndrica y la distal cónica, pero en el mismo material anterior
son cilíndricas con el extremo redondeado. Obsérvese también las figuras 862
a 864 de Selling (1947), con espinas muy gruesas y cilíndricas.

H. arborescens A. Gray subsp. bushiana (Deg.) Carlq.

Subprolatos a esferoidal prolatos (53-61 X 48-56 yu sin las espinas). Apo-
colpios de 13-16 y de diámetro. Colpos de 40-48 X 0-0.8 u; extremos de los
colpos agudos y margen levemente ondulado. Ora de 2-5 X 12-18 p., con
límites poco notorios y extremos ecuatoriales m/m agudos. Mesocolpios de
42-51 p de ancho, convexos.

Exina de 6-6.5 y de grosor bajo las espinas, de ca. 3-5 y entre éstas.
Tectum de ca. 0.5-0.8 de grosor. Espinas de 3-5.5 u de altura, de 2-ca. 3 u
de diámetro en la base, romas, cónicas desde la base, con una cavidad ligera-
mente alargada, de 0.5-ca. 1 yu de diámetro, cerca de la base. Infratectum de
ca. 3-5 y de grosor bajo las espinas, de m/m 3 ¡y entre éstas. Báculos del
infratectum de sección circular a irregular, de 3-5 (+7), y de diámetro; otros
más delgados, de 0.5-1 ¡ de diámetro. Nexina de 1-1.5 y de grosor.

MATERIAL ESTUDIADO:
Hawaii, Oahu. Leg. Bush, Potter, Degener € Park 9981, año 1935 (Isotypus: M);
Oahu, Halawa, rain forest. Leg. O. Deneger 11927-A, 22-11-1938 (M).

12

H. arborescens A. Gray subsp. swezeyi (Deg.) Carlq.

Subprolatos a esferoidal prolatos (48-58 X 40-53 ¡y sin las espinas).
Apocolpios de 18-22 y de diámetro. Colpos de 34-37 X 0.5 ¡, extremos de los
colpios redondeados a agudos, márgenes leve e irregularmente ondulados. Ora
de 33,5 X 12-14 y, márgen poco visible, no bien delimitado; extremos ecua-
toriales agudos. Mesocolpios de 33-42 pe de ancho, convexos.

Exina de 5-6 y de grosor bajo las espinas, de 4-5 ¡ entre ellas. Tectum
de 0.5-ca. 1 de grosor. Espinas de 3-5 de altura, de 2-5 y. de diámetro en
la base, con la mitad proximal cilíndrica y la distal cónica, m/m agudas a
romas, con una cavidad esférica o ligeramente alargada longitudinalmente,
de m/m 0.5 y de diámetro, cerca de la base. Infratectum de 4-4.5 y de grosor
bajo las espinas, de 2.5-3.5 ¡ entre éstas. Báculos de sección m/m circular, de
1-3 ¡ de diámetro, los más gruesos bajo las espinas; algunos de sólo 0.5 y
de diámetro en menor número. Nexina de 1-1.5 y de grosor.

MATERIAL ESTUDIADO:

Hawaii, Oahu. Waimea Valley. Leg. Forbes 2035.0, 13-11-1915 (BISH); Oahu.
Pupukea-Kahuku trail overlooking Kahuku. Leg. O. Degener 12034,
24-1V-1938 (S).

H. arbuscula Hillebr. subsp. oahuensis (Hillebr.) Carlq.

Subprolatos a esferoidal prolatos (52-69 X 48-60 y sin las espinas). Apo-
colpios de 18-22 ¡ de diámetro. Colpos de 40-50 y de largo, con los márgenes
casi en contacto en el ecuador; extremos de los colpos agudos a redondeados
y márgenes irregularmente ondulados. Ora de 3.5-4 X 13-15 ¡; márgenes poco
visibles, no bien delimitados; extremos ecuatoriales m/m agudos. Mesocolpios
de 40-45 pe de ancho, convexos.

Exina de 5-6.5 de grosor bajo las espinas, de 4.5-5.5 y entre ellas. Tectum
de 0.5-1 pe de grosor. Espinas de 3.5-5 p de altura, de 1.5-ca. 3 y de diámetro
en la base, con la mitad proximal cilíndrica y la distal cónica o m/m cilín-
dricas desde la base, m/m agudas a romas, con una cavidad de 0.5-1 ¡ de
diámetro, esférica o algo alargada, cerca de la base. Infratectum de 4-5 po
de grosor bajo las espinas, de 3-4 ¡, entre éstas. Báculos del infratectum de
2.5-3.5 uy de diámetro, de sección m/m circular; algumos más pequeños y en
menor número, de 0.5-1 p de diámetro. Nexina de 1-1.5 mM de grosor.

MATERIAL ESTUDIADO:
Hawaii, Oahu, Makalela. Leg. J. Lydgate s.n. (BISH); Oahu, Waianae mts.
Leg. S. Carlquist 1910, 2-VI1-1966 (BISH).

13

H. lydgatei Forbes.

Subprolatos a esferoidal prolatos (60-72 X 52-58 y sin las espinas). Apo-
colpios de 16-19 y. de diámetro. Colpos de 45-50 X 1-3 po márgenes de los
colpos irregulares, extremos agudos. Ora de 5 X 15 y, no bien delimitados,
con los extremos ecuatoriales agudos. Mesocolpios de 40-44 ¡ de ancho, con-
vexos.

Exina de 5-5.5 y de grosor bajo las espinas, de 4-4.5 entre éstas. Tectum
de m/m 0.5 y de grosor. Espinas de 3-4 ¡y de altura, de m/m 2 y de diámetro
en la base, cilíndricas en la mitad proximal, cónicas en la mitad distal, m/m
agudas a romas, con una cavidad esférica o algo alargada, de 0.5 y de diá-
metro, cerca de lá base. Infratectum de 4-4.5 ¡ de grosor bajo las espinas, de
3-3.5 y entre éstas. Báculos del infratectum de 1.5-6 (-7) de diámetro, de
sección m/m circular en los de menor diámetro hasta irregular en los más
gruesos, los de menor diámetro generalmente cerca del margen de los colpos;
en menor número algunos de menos de 1 de diámetro. Nexina de m/m 1 u
de grosor, la nexina 2 engrosada hacia el margen de los colpos.

MATERIAL ESTUDIADO:
Hawaii, Kauai Is!. Koloa District. Leg. Stauffer £* Dehler 5912, IV-1964 (BISH).

MOQUINIA

Moquinia DC. es un género monotípico de Compositae-Mutisieae; su
única especie es M. racemosa (Spr.) DC., arbusto endémico de los estados
de Bahía y Minas Geraes, Brasil. La historia del género ha sido expuesta
por Cabrera (1969). Este autor había considerado a Moquinia como sinónimo
de Gochnatia (Cabrera 1950), pero en 1969, al examinar detenidamente las
especies de Gochnatia durante la preparación de la monografía de este
género, pudo encontrar en M. racemosa caracteres que le permitieron sepa-
rarla de Gochnatia, estableciendo que era la única especie de Moquinia. Entre
los caracteres que le permitieron hacer la separación, señala a la morfología
de los granos de polen, indicando que tiene “polen equinado, con espinas
prominentes”, en cambio Gochnatia tiene “polen no equinado, con espinas
reducidas o vestigiales”. En verdad, los granos de polen de Moquinia presentan
características únicas dentro de las Mutisieae, entre las que resaltan las espinas
angostamente cónicas y la estructura de la exina. Ya se ha indicado anterior-
mente, al hablar de Hesperomannia, que este tipo de espinas es muy raro en
esta tribu. En cuanto a la sexina, Moquinia tiene tectum formado por báculos
finos y cortos, distintamente espaciados y unidos por sus cápitas en una mem-
brana terminal punctada; la membrana de soporte es nítida y los báculos
del infratectum son gruesos y ramificados; el infratectum es 3 a 4 veces más

14

grueso que el tectum. Esta combinación de caracteres, especialmente el tectum
de una capa con báculos bien diferenciados, no se presenta en otras Mutisieae,
no considerando en esta comparación los tecti de dos zonas, en que en la
mitad inferior de los báculos del tectum existe un material de relleno difuso,
o los báculos tienen un engrosamiento central que en conjunto semejan una
membrana divisoria. Los casos de tectum de una sola capa de Nassauvinae,
Stomatochaeta, algunas Gochnatia especialmente de la sección Moquiniastrum,
Dicoma tomentosa (que es diferente de las demás especies del género), Cyclo-
lepis y algunas Ainsliaea, no son comparables con Moquinia.

Las espinas, por su tamaño se asemejan a las de Hesperomannia, pero se
diferencian en que son cónicas desde la base, aunque esta diferencia no es tan
marcada pues se encuentran algunas que tienen la porción basal cilíndrica.
En algunas especies de Erythrocephalum, Pleiotaxis y Macroclinidium las es-
pinas pueden llegar a tener hasta 5 y. de altura, pero la base es muy ancha.

MOQUINIA RACEMOSA (Spr.) DC.

Granos de polen 3-colporados, subprolatos a esferoidal prolatos (44-54 X
43-49 y, sin las espinas). Apocolpios de 12-13 ¡, de diámetro. Colpos de 30-36 X
2.54.5 y; margen de los colpos irregular y extremos agudos a redondeados.
Membrana colpal lisa. Ora lalongados, contraídos en el eje polar, con ex-
tremos ecuatoriales m/m agudos, de 5-6 y de diámetro polar mayor, de 2.5-3
en la contracción, de 13-19 y. de diámetro ecuatorial. Mesocolpios convexos,
de 30-35 y de ancho. Amb m/m circular.

Exina espinosa, densa y finamente punctitectada, de 6-9 p de grosor bajo
las espinas, de 5.5-7 ¡y entre éstas. Espinas de 4-5 y de altura y 2-3 ¡y de diá-
metro en la base, 2-4 por mesocolpio en el ecuador, romas, cónicas desde la
base o, a veces, cortamente cilíndricas en la parte basal, con una cavidad
m/m esférica, de 1-1.5 y de diámetro, cerca de la base. Tectum baculado, de
1.5-2.5 y de grosor bajo las espinas, de 1.5 y entre éstas. Báculos del tectum
finos, distintamente espaciados, en número de 10-13 en 5 y, capitados, unidos
por los cápitas formando una membrana terminal punctada. Membrana de
soporte del tectum de 0.5-ca. 1 ¡y de grosor, nítida. Infratectum baculado, de
3-6.5 y de grosor bajo las espinas, de 2.5-4 y entre éstas. Báculos del infra-
tectum ramificados, los que soportan las espinas dilatados por debajo de las
ramificaciones y más gruesos (2.5-3 y) que el resto (0.5-1 u); ramificaciones
cortas y finas. Nexina 1 de ca. 0.5 ¡ de grosor, nexina 2 de 1.52 y, más
gruesa hacia el margen de los colpos.

MATERIAL ESTUDIADO:
Brasil, Minas Geraes, Serra do Cipó. Leg. A. Duarte 3289, 18-1X-1950 (5).

15

RESULTADOS Y DISCUSION

Hesperomannia y Moquinia representan dos tipos palinológicos únicos en
las Compositae-Mutisieae. Las especies de Hesperomannia parecen ser palino-
lógicamente homogéneas. En H. arborescens subsp. swezeyi y H. arbuscula
subsp. oahuensis el diámetro de los báculos es menor, al mismo tiempo que
más numerosos que en H. arborescens subsp. bushiana y H. lydgatei; esto
podría servir de índice para caracterizar los taxa, pero para ello es necesario
examinar un mayor número de ejemplares, así como material de H. arborescens
subsp. arborescens y H. arbuscula subsp. arbuscula. Por estas razones los re:
sultados obtenidos no apoyan ni rechazan las ordenaciones sistemáticas que
se han propuesto para el género (Degener 1946, Carlquist 1957b). Tampoco
indican cuáles serían los posibles ancestros ni contribuyen a esclarecer los
problemas fitogeográficos hawaiianos, ya que no se le puede homologar con
ningún género de Mutisieae asiático O americano.

Moquinia es el único género que, en cierto modo, presenta algunos ca-
racteres comunes con Hesperomannia como es el tipo de espinas, pero, a su
vez, Moquinia también tiene una morfología particular que lo separa del resto
de las Mutisieae. Esto justifica plenamente el criterio de Cabrera (1969) al
establecer que se trata de un género monotípico.

Mientras no se haga un estudio comparativo completo de los dos géneros,
será preferible considerarlos como aislados dentro de la tribu.

AGRADECIMIENTOS

Deseamos expresar nuestro agradecimiento a las siguientes personas:
Prof. Tycho Norlindh y Sr. Benkt Sparre, Sección Botánica del Naturhistoriska
Riksmuseum, Stockholm; Dr. P. van Royen, Departamento de Botánica del
Bernice P. Bishop Museum, Honolulu; Dr. Júrke Grau y Gudula Grau, Ins-
titut fir Systematische Botanik del Universitát, Múnchen; Dr. J. V. Crisci,
División de Plantas Vasculares, Universidad Nacional de La Plata; Pe. R.
Reitz, Jardín Botánico de Río de Janeiro; Dra. Th. S. Melhem, Instituto
de Botánica, Secretaría de Agricultura, Sáo Paulo; Dr. “T. Seki, Botanical
Institut, Faculty of Sciences, Hiroshima University; Dr. J. W. Wholey, Agri-
culture and Fisheries Department, Hong Kong; Dr. J. M. Maheshwari, National
Botanic Gardens, Lucknow; y Dr. R. Ferreyra, Herbario San Marcos, Lima.

A la Srta. E. Orellana, quien preparó el material y los cortes y al Sr. F.
Calvo, autor de las láminas.

16

BIBLIOGRAFIA

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Paris: 1-316.

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1868. Notes on Hesperomannia, a new genus of Hawaiian Compositae.
Mem. Boston Soc. Nat. Hist. 1(4):527, pl. 20.

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Mus. La Plata, Bot. 15(74):37-48.
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Impresión privada. Honolulu.

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Eine einfache Methode zur Herstellung von Schnitten durch
azetolysierte Pollenkórner. Grana Palynol. 8(2-3):252-254.

C. MARTICORENA

Granos de polen de plantas chilenas. 11. Compositae-Mutisieae.
Gayana, Bot. 21:1-107.

Studies in hawaiian pollen statistics. Part 11. The pollen of the
hawaiian phanerogams. Bernice P. Bishop Special Publ. 38.

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A review of the endemic genera of hawaiian plants. Bot. Rey.
(Lancaster) 33(3):216-259.

18

FIGURAS

Hesperomannia arborescens subsp. swezey!. Fig. 1, grano de polen entero, vista
ecuatorial y polar. Fig. 2, corte de la exina. Fig. 3, sección de los báculos
en 10 ¡u?. Figs. 6-8, tipos de espinas. Escala menor para la Fig. 1, la mayor para
el resto (Figs. 1-3, 5 y 6, de Degener 12034; Figs. 4, 7 y 8, de Forbes 2035.0).

19

xa

1
1
U

Fig. 9, grano de polen entero, vista

Hesperomannia arbuscula subsp. oahuensis.
11-13, sección de los báculos

ecuatorial y polar. Fig. 10, corte de la exina. Figs.
en 10 0. Figs. 14-17, tipos de espinas. Escala menor para la Fig. 1, la mayor

para el resto (Figs. 9-12, 14 y 15, de Lydgate s.n.; Figs. 13, 16 y 17, de Carlquist
1910).

20

Hesperomannia arborescens subsp. bushiana. Figs. 18 y 19, tipos de espinas.
Figs. 21 y 22, sección de los báculos en 10 y”. Hesperomannia lydgatez. Fig. 20,
tipo de espina. Fig. 23, sección de los báculos en 10 po: Todo a la misma escala
(Figs. 18, 19 y 22, de Degener 11927 A; Fig. 21, de Degener 9981; Figs. 20 y 23,
de Stauffer £ Dehler 5912).

21

Moquinia racemosa. Fig. 24, grano de polen entero, vista ecuatorial y polar.
Fig. 25, corte de la exina. Fig. 26, sección de los báculos en 10 ¿?. Figs. 27-30,

tipos de espinas. Escala menor para la Fig. 24; la mayor para el resto (Todo
de Duarte 3289).

ZZ

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR
EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE LA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE) EL

15 DE, ABRIL DE. 1975.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones origimales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una
Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que
los números se publican tan pronto como la Comisión
Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:
COMISION EDITORA

CasiLLa 301 — CONCEPCIÓN
CHILE

'GAYANA

MES TITU TO DE BIOLOGIA

BOTANICA le MO N? 30

DESMIDIACEAS DE CHILE. I. DESMIDIACEAS DE
LA REGION DE CONCEPCION Y ALREDEDORES

por

OSCAR O. PARRA

MAR 1
N EW el O Í - K

BOTANICAL GARDEN

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE
DIRECTOR : Mario Alarcón A.
EDITORES
Mario Alarcón A. Lajos Biro B.
Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

GAYANA

MESE ITU RO "BE BTOLOGIA

BOTANICA AE) N? 30

DESMIDIACEAS DE CHILE. 1. DESMIDIACEAS DE
LA REGION DE CONCEPCION Y ALREDEDORES

por

OSCAR O. PARRA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente
conocerse sino luego que los sabios del país hagan un
especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

DESMIDIACEAS DE CHILE. I. DESMIDIACEAS DE LA
REGION DE CONCEPCION Y ALREDEDORES (*)

por

OSCAR O. PARRA (**)

RESUMEN

Se hace un estudio de las Desmidiáceas de los más importantes cuerpos
de agua dulce (arroyos, ríos, charcos y lagunas) de la región de Concepción,
Chile.

Se determinó un total de 156 taxa, de los cuales 92 corresponden a nuevas
citas para Chile.

Se entrega un análisis taxonómico de cada taxa, incluyéndose además
dibujos, distribución en Chile y datos ecológicos.

ABSTRACT

A study on Desmidiaceae from the most important freshwater bodies
(i.e. streams, rivers, ponds and lagoons) in the region of Concepción, Chile,
has been carried out.

As a whole 156 taxa have been determined, 92 of them are new for Chile.
Taxonomic analysis, drawings, distribution and ecological data are presented.

AGRADECIMIENTOS

Deseo expresar mi especial gratitud al Gobierno de la República Federal
de Alemania que, por intermedio de una beca de la Fundación Alemana para
el Desarrollo Internacional, me permitió, durante un año, perfeccionar mis
conocimientos sobre la Biología de Microalgas en toda su expresión. Vayan

(*) Investigación realizada bajo el auspicio del Consejo de Investigación Científica de la Uni-
versidad de Concepcin.

(**) Departamento de Botánica, Instituto de Biología “Ottmar Wilhelm Grob”, Universidad
de Concepción, Chile.

o

también para los profesores P. Bourrelly (Museum National d'Histoire Na-
turelle, Paris, Francia), J. Gerloff (Botanisches Museum Berlin-Dahlem), C.
Soeder (Abteilung fúr Algenforschung und Algentechnologie G.S.F.), W. Koch
(Sammlung von Algenkulturen, Pflanzenphysiologisches Institut der Universitát
Góttingen), G.H. Schwabe (Max-Planck Institut fúr Limnologie) y D. Mollen-
hauer (Forschungs-institut Senckerberg) mis más sinceros agradecimientos por
sus enseñanzas y facilidades otorgadas durante mi estadía en sus respectivas
instituciones.

A la Sra. S. Adlerstein mi gratitud personal por su ayuda en la confección
del manuscrito, a los dibujantes artistas de nuestro Departamento de Botánica,
Sres. Nelson Moya y F. Calvo por sus admirables dibujos y a la Secretaria del
Departamento de Botánica, Srta. Elsa Ruiz por la mecanografía del trabajo.

IN TRODUCCION

El conocimiento actual que se tiene de las Desmidiáceas de Chile, se
debe fundamentalmente a los interesantes trabajos del profesor e investigador
sueco Dr. K. Thomasson (1955, 1963), pero fue Borge (1901, 1906) el primero
en dar a conocer el grupo para nuestro país. Los únicos trabajos de inves-
tigadores chilenos en esta familia son los de Espinoza (1923), Solari (1963),
Navarro y Avaria (1971) y los del propio autor (1973a, 1973b). En todo caso,
ninguno de los autores anteriormente indicados realizaron un estudio siste-
mático del grupo, que abarcara exclusivamente a las Desmidiáceas y que el
muestreo haya sido realizado en el transcurso de todo un año.

AREA DE ESTUDIO, MATERIALES Y METODOS

Para el estudio de las Desmidiáceas de la región de Concepción, se eli-
gieron 7 lugares de muestreo, los que tenían o presentaban ambientes conti-
nentales con ecología distinta, con el fin de tener representados los diferentes
ambientes dulce-acuícolas que se encuentran en la región (Fig. A).

a

a

OLE RAW Q

// CONCEPCION

DE

ESCALA

Fig. A.— Región de Concepción.

1: 250000

130”

En cada uno de estos lugares de muestreo se recolectó una muestra men-
sual, desde enero a diciembre de 1971, con el objeto de obtener una idea
general de la variación estacional de los taxa.

Para las formas planctónicas la recolección se hizo con una red de 35 mi-
crones de trama; para las formas bentónicas se procedió a tomar la muestra
directamente con un frasco desde el fondo o bien usando una cuchara. Todas
las muestras fueron conservadas en formalina al 39%, neutralizada. Ellas se
guardan actualmente en el Laboratorio de Ficología del Departamento de
Botánica del Instituto de Biología de la Universidad de Concepción.

A continuación se describe cada una de estas estaciones. Los 6 últimos
habitats corresponden a los mismos estudiados por Rivera (1974) al inves-
tigar la flora diatomológica de Concepción.

EsTacióN 1: RIO ANDALIEN 1.— El lugar se encuentra a la altura del
Km. 10 del camino que une la ciudad de Concepción con el pueblo de Bulnes
(36249'S, 72259'W). Este lugar sufre fuertes variaciones en el transcurso del
año; en primavera y verano se forman grandes pozones o pequeñas lagunitas
que quedan aisladas del cauce del Río Andalién. En otoño e invierno, al
aumentar el río su cauce, se producen grandes inundaciones cubriendo los
pozones anteriormente nombrados. La temperatura en los meses de otoño e

invierno varió de los 9% a 12%C y en primavera y verano alcanzó valores de
MAA

Estación 2: LAGUNA PINEDA. Situada en la misma dirección que el lugar
anterior, aproximadamente a 14 Km. desde Concepción (36%49'S, 72255'W).

Esta laguna es de tamaño pequeño, de aproximadamente 200 m de largo
por 150 m de ancho; tiene un fondo pantanoso poco profundo (3-6 m) y se
encuentra cubierta en gran parte por la planta llamada “lirio de agua”,
Eichornia crassipes (Mart.) Solms-Lanb. La temperatura superficial del agua
varió entre 10% y 21%C en el año, correspondiendo al mes de agosto la tem-
peratura más baja.

EsTacióN 3: RIO ANDALIEN 2.— Este río tiene su origen cerca de la locali-
dad de Florida (más o menos 45-50 Km de la ciudad de Concepción) y tiene
un curso tortuoso y su caudal varía considerablemente durante el año. El lugar
preciso de recolección se llama “Puente 3” por donde pasa el camino que une
Concepción y Bulnes (36%49'S, 72253'W), a más o menos unos 20 Km de la
ciudad de Concepción. En esa parte del río, la vegetación es escasa y no in-
fluencia mucho al agua del lugar de muestreo. La temperatura fue de los 5%

a 122%C en otoño e invierno, y durante la primavera y verano varió entre los
15.57 y.25G.

Estación 4: LAGUNA LO MENDEZ. .— Está situada en el límite norte de la
ciudad de Concepción (36%250'S, 73%02'W), en el inicio de la autopista que
une Concepción con el Puerto de Talcahuano. Es de forma casi circular con
un diámetro de unos 80 m. Sus aguas se encuentran contaminadas por los des-
perdicios domésticos, en su mayor parte procedentes de los desagúes de la
población vecina. La temperatura en otoño e invierno varió entre los 12*-13%C
y en primavera y verano entre los 17% y 23*C.

Estación 5: RIO BIO-BIO.— Este río, que nace en las lagunas de Galletue
e Icalma en la región andina de la provincia de Malleco, a unos 1160 m de
altura, tiene en el lugar de muestreo unos 1.000 m de ancho y una velocidad
de 45 Km por hora, cuando su cauce es normal. Desemboca en el mar, in-
mediatamente al sur de la ciudad de Concepción. El lugar de recolección está
situado en la localidad que se conoce con el nombre de Leonera y queda en
el camino Concepción-Hualqui (exactamente en 36%58'S, 73%00"W). Este río
también aumenta su caudal en invierno. La temperatura superficial del agua
varió entre los 9 a 13%C en otoño e invierno, y en verano y primavera osciló
entre los 16%—C a 21C. S

EstacióÓN 6: ARROYO LEONERA.— Corresponde a un arroyo de rápido
caudal y de una anchura que varía de 3-6 m, se encuentra situado en la locali-
dad de Leonera, hacia el lado Este del Río Bío-Bío, entre las localidades de
Chiguayante y Hualqui (36%56'S, 73200'W). Las temperaturas más bajas fueron
en invierno, 9-10%C, alcanzando en primavera-verano valores entre los 13% y

20%C.

EsTacióN 7: LAGUNA LA POSADA.— Es una pequeña laguna, que se en-
cuentra a 17 Km al sur de la ciudad de Concepción, por el camino que une
esta ciudad con el pueblo minero de Coronel (36%56'S, 73210"W). La laguna
se encuentra rodeada por vegetación arbórea en su mayor parte por abun-
dantes Ciperáceas y Juncáceas en sus orillas. En invierno la temperatura fue
de 119C y en verano la máxima fue de 23.5%C.

RESULTADOS

Se determinaron un total de 156 taxa, 92 de los cuales son nuevas citas
para Chile, entre ellos 56 especies y 36 variedades.

La lista completa de los taxa y su ubicación en los lugares estudiados
es la siguiente:

(+4) Corresponde a primera cita para Chile.

Andalién 1

Lag. Pineda

Andalién 2

Lag. Lo Méndez

Río Bío-Bío

Arroyo Leonera

Lag. La Posada

Cylindrocystis brebissont

crassa (*)

Netrium digitus

”

”

digitus var. rectum

interruptum (*)

interruptum var. interruptum f.
minus (*)

Gonatozigon aculeatum

brebissonú (*)
kinahantii (*)
monotaentum
pilosum (*)

Euastrum abruptum var. subglaziowi (*)

acanthophorum (*)
ansatum

bidentatum (*)

binale var. parallelum (*)
denticulatum

didelta (*)

dubium

elegans (*)

evolutum (*)

evolutum var. glaziowii (*)
evolutum var. perornatum (*)
gemmatum (*)

humberti (*)

johnsoni (*)

oblongum (*)

spinulosum (*)

validum var. glabrum (*)

Micrasterias radiosa var. ornata f. elegantior

”

”

denticulata
truncata

++ ++

+

FR +44 +4++ ++

+++

+++

+++

HFR+++

+++

+++

(*) Corresponde a primera cita para Chile.

Actinotaenium cucurbitum (*)

”

minultissimum (*)

Closterium acerosum

”

aciculare
acutum (*)
archerianum
calosporum (*)
delpontei (*)
dianae
ehrenbergú

ehrenbergi var. malinvernianum (*)

gracile

kuetzingú

libellula

lineatum

littorale (*)

montliferum

parvulum

parvulum var. angustum (*)
pronum

turgidum (*)

Pleurotaentum ehrenbergil

ehrenbergil var. undulatum
ovatum (*)
trabecula
trabecula var. rectum (*)
truncatum (*)

Cosmarium bioculatum

bioculatum var. depressum (*)
binum (*)

bipunctatum (*)

bireme (*)

bireme var. huzelii (*)

Andalién 1

+++

++++

+

N

D)

E
a E e
A q a
ai Er oa
a a a
+
+ + +
+
+
+
+ +
+ + =R
a E
+

+
+ + -
+
+
+
NS
+
A
+ +
+
+
+
A

Arroyo Leonera

Lag. La Posada

Ss

+++

Y 3 a
A. E E: E. bos = o S S
Ss E a 7 AU
E A O
: ES O hi 3 50 3 50.0 o) 50
(*) Corresponde a primera cita para Chile. Er Z lo E Z
Cosmarium blytti (*%) + =
ES circulare (*) + + >
pS circulare var. minus (*) -
E connatum ==
$ contractum + +
ál depressum (*) Le
É depressum var. circulare (*) +
+ dichondrum (*) Ap O. +9. Ss
É difficile +
$ formosulum (*) +
5 isthmochondrum (*) Es
E laeve E +
úl laeve var. octangulare (*) ==
S lobatum var. minor (*) +
a melanosporum (*) 3
dd minimum (*) =ñ
e monomazum var. polymazum (*) +
$ obtusatum (*) = +
se ochthodes var. amoebum Sr ==
a ornatum (*) == +
ze orthostichum var. pumilum (*) ==
3 ovale (*) E +
E portianum +
dá pseudoconnatum +. +
a pseudopyramidatum +. +
$ pseudotinecense T
$ punctulatum + +
E quadrum Seo
Ss speciosissimum (*) IO POE +
ñ subspeciosum (*) SE + +
5 subspeciosum var. validius HA ltd +
5 subtumidum var. borgei (*) +
- subprotumidum +

—HÓ—

e o y!

(*) Corresponde a primera cita para Chile.

Cosmartum trilobulatum var. bioculatum (*)

”

venustum var. minus (*)

Xanthidium antilopaeum

Staurodesmus convergens

cuspidatus
dejectus
dickiei
extensus (*)
mamillatus (*)
patens
subulatus
triangularis

Staurastrum alternans

asterias

asterioideum var. nanum (*)
avicula (*)

avicula var. subarcuatum (*)
bieneanum (*)

brevispinum

chaetopus (*)

dilatatum

disputatum var. extensum (*)
furcigerum

gladiosum

gracile

laeve

leptacanthum (*)
leptocladum

longipes (*)

manfeldtii var. annulatum (*)
muticum

orbiculare

orbiculare var. depressum (*)

SÓ

Andalién 1

+

EZ e $
ES
+
+ +
—-
—
=
+ +
=
+ +
—
+ +
+ +
=-
-
=
=
=
=
-
-
=
-
—-
—
—=

Arroyo Leonera

Lag. La Posada

++ +++++

(+) Corresponde a primera cita para Chile.

Lag. Lo Méndez
-B

Lag. Pineda
Andalién 2

Andalién 1
| Lag. La Posada

o Bi
| Arroyo Leonera

Staurastrum pinnatum var. reductum (49)
ña polymorphum uN

polymorphum var. cinctum (*)

+++
+
+ +

punctulatum
quadrangulare (*)

+++
=>

quadrangulare var. contectum
o rotula (*)

setigerum 35

++

sexcostatum var. productum (*)
spongiosum (*)

striolatum

tetracerum En
trifidum var. inflexum (*)

vestitum (*)

Hyalotheca dissiliens +

”»

HERRIA F+4++

dissiliens var. hians (*)

de mucosa +
Bambusina brebissonii E
Teilingia granulatum

+
+H+++

Sphaerozosma aubertianum
dd laeve (*)

Desmidium baileyi (*)

e
+

db

baileyi var. baileyi f. tetragonum (*)
cylindricum (*)

+++
++

swartzti +

A las Desmidiáceas encontradas en el presente estudio hay que agregar
las encontradas por Thomasson (1963), para la Laguna Chica de San Pedro
y por Parra (1973a, 1973b) para el Estero Lenga y la Laguna Verde, respec-
tivamente, lugares que se encuentran en la región de Concepción, y cuya
lista es la siguiente:

0 A

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO (Thomasson, 1963).

Xanthidium antilopacum

Staurodesmus cuspidatus

Staurodesmus subulatus

Staurastrum armigerum var. furcigerum
Staurastrum rotula var. smithu
Sphaerozosma aubertianum

ESTERO LENGA (Parra, 1973a)

Closterium acerosum
Staurastrum longiradiatum

LAGUNA VERDE (Parra, 1973b)

Arthrodesmus octocornis

Closterium acutum

Cosmarium regnesú

Staurastrum crenulatum

Staurastrum iotanum

Staurastrum tversenti var. americanum
Staurastrum irregulare

Staurastrum leptocladum

Staurastrum polymorphum
Staurastrum smithi

Staurastrum tetracerum

Staurastrum tetracerum var. biverruciferum

Staurastrum tetracerum f. trigona

Por lo tanto, los taxa de Desmidiáceas conocidos hasta el momento para
la región de Concepción, alcanzan a 168, los que se distribuyen en los si-
guientes géneros:

SES

€xP-—_—_— A A A AA AA A AAA A A A A A _ _ _ __— __ ___ A A A AAA

NUMERO DE TAXA

Presente trabajo

Otros trabajos

Cosmarium
Staurastrum
Closterium
Euastrum
Staurodesmus
Pleurotaentum
Gonatozigon
Desmidium
Micrasterias
Netrium
Hyalotheca
Cylindrocystts
Actinotaentum
Sphaerozosma
Xanthidium
Arthrodesmus
Bambusina
Teilingia

41 (27) *

35 (18)

19 (7)

18 (15
AZ)
Dl)
(9)
(a)
3
Aia
3 (1)

2 (1)
0

5

* El número entre paréntesis indica los taxa de cada género que se citan por primera vez para

nuestro país.

La distribución anual y la lista de las Desmidiáceas encontradas en cada

uno de los lugares muestreados en la región de Concepción es:

ANDA LTEN 71

Enero

Gonatozigon aculeatum
brebissonti
monotaenium
pilosum
Closterium acerosum

”

archerianum

”

calosporum
dianae

+

=

Febrero

Marzo
Abril

HR +++

++

Julio

Agosto

Septiembre
Octubre

Noviembre

| Diciembre

++

ANTFALIEN: 1

Closterium ehrenbergu

gracile
kuetzingt
di libellula
littorale

parvulum
pronum
turgidum

montliferum

Pleurotaentum ehrenbergú

”

ehrenbergi var.
undulatum
trabecula

Euastrum ansatum

bidentatum

binale var. parallelum
denticulatum

elegans

gemmatum

spinulosum

Micrasterias denticulata

,”

truncata

Cosmarium circulare

contractum
dichondrum
difficile
isthmochondrum
laeve
pseudoconnatum
pseudopyramidatum
punctulatum
quadrum
speciosissimum
subspeciosum
subspectosum var.

Enero
Febrero

+++
+ +

++++
+

+
+

HERE + +++
+++
+++

+
++

A

Marzo
Abril

++

++++

Mayo

+++

go op
E) 2
[=
$ ¿08 0
EM
ER
to + +++
++
+
+++
+
+
+
+ +
+
+ + +
+
+
+
+
+
++
++
+ +
+ +
A e
+ +
+
+
+ o +++
+ +
+ + +

Diciembre

++

+++

ANDALIEN 1

Enero

Cosmarium validius
bioculatum
Xanthidium antilopaeum
Staurodesmus dejectus
» dickiei
Y mamillatus
Staurastrum bieneanum
dilatatum
gladiosum
polymorphum
punctulatum

quadrangulare

contectum

setigerum
Si tetracerum
Hyalotheca dissiliens

Si mucosa
Bambusina brebissonti

Desmidium swartzii

LAGUNA PINEDA

Gonatozigon aculeatum
A brebissonil
monotaenium
pilosum
calosporum

Closterium acerosum

”

aciculare
calosporum
Ez delpontei
dianae
ehrenbergii

trilobulatum var.

quadrangulare var.

+ +++

+++

+

Febrero

Marzo
Abril

+++

Mayo

+

Junio

Julio

Agosto

Septiembre
Octubre

++

Noviembre
Diciembre

+ ++

+

++

Ss

++ +++

LAGUNA PINEDA o
Closterium gracile
$ huetzingii
e montliferum e
:1 parvulum +
el parvulum var. angustum
ó pronum
d turgidum E
Pleurotaenium ehrenbergii le
A ehrenbergit var.
undulatum
ES ovatum +
Si trabecula
P trabecula var. rectum
á truncatum =F

Euastrum abruptum var. subglaziowi +
acanthophorum

ansatum +
bidentatum 6
denticulatum
Y didelta
elegans

+++

evolutum

evolutum var. glaziowit
evolutum var. perornatum
gemmatum

spinulosum +
Micrasterias radiosa var. elegantior +
$ denticulata

e truncata +
Actinotaenium minutissimum

Cosmarium bioculatum

binum e
bipunctatum

circulare 2
connatum

217

Febrero

+++
++++

Marzo
Abril

+

+ +

- Mayo

++

+++

Junio

Julio
Agosto

Septiembre
Octubre

Noviembre

Diciembre

+++

+ +++

EAGUNA INED A

Enero
Febrero

Marzo
Abril
Septiembre
Octubre
Noviembre
Diciembre

Cosmarium contractum

++

depressum
dichondrum
isthmochondrum
laeve

lovatum var. minor
obtusatum
ornatum
orthostichum var.
pumilum

ovale
pseudoconnatum
pseudopyramidatum
quadrum

E + +++

speciosissimum
subspeciosum var.

AS

validius
trilobulatum var.
bioculatum
Xanthidium antilopaeum E
Staurodesmus convergens ES
cuspidatus

dejectus

extensus +
mamillatus

Staurastrum asterias +
bieneanum

brevispinum

dilatatum

disputatum var. extensum
furcigerum

gladiosum “E
laeve

manfeldtii var. annulatum +
muticum +

7 PO

++
+ +

+++

+++
+++

++++

++

LAGUNA PINEDA

Enero
Febrero

Marzo
Abril
| Mayo

¿

Junio
Julio

Agosto

| Septiembre

Octubre

Noviembre

Staurastrum orbiculare
polymorphum

cinctum
quadrangulare
rotula
setigerum

tetracerum

vestitum

Hyalotheca dissiliens

”

”

mucosa
Bambusina brebissonii

Desmidium baileyi var. batleyi

f. tetragonum

”

cylindricum
á swartzi
Teilingia granulatum
Sphaerozosma aubertianum

»”

laeve

ANDALLEN 2

Gonatozigon monotaentum
Closterium acerosum
dianae
ehrenbergu
gracile
lineatum
moniliferum
Pleurotaenium ehrenbergii
oe trabecula
Euastrum ansatum

”

denticulatum

polymorphum var.

trifidum var. inflexum

dissiliens var. hians

=
+++

pinnatum var. reductum

++++

HH +++
++++

e A

+ +

++

++++

=

+++

+++++

+ +

+++

+++

+ EE | Diciembre

+
HF ++++4++ +

+
HF+ +++

ANDALIUEN 2

Euastrum dubium

gemmatum

johnsonii
a spinulosum
Micrasterias truncata
Cosmarium binum

Sá blytti
dichondrum
laeve
ochthodes var. amoebum
spectosissimum
subspeciossum var.
validius
subprotumidum
Xanthidium antilopaeum
Staurodesmus dickiei
e mamillatus
Staurastrum bieneanum

”

brevispinum

”

setigerum
2 tetracerum
Hyalotheca dissiliens

Se mucosa
Bambusina brebissonit
Desmidium swartzit

LAGUNA LO MENDEZ

Closterium gracile

Cosmarium circulare
Ñ circulare var. minus

laeve

Staurastrum chaetopus

a longipes

”

Enero

Febrero

++

+ +++

+

+

+

E 1

Marzo
Abril

y
E
>=
ps 7 a la
EC
A
Labs
+
+
>
+
+
- .
+ E
—
+
+
Ll
+
+
“+
+
>
—
+ +

Octubre

Noviembre

++

Diciembre

+

++++

RETO" BIO - BLO

Enero

Gonatozigon brebissonii

”

kinahani

”

monotaenium
Closterium acerosum

”

ehrenbergii
Ni moniliferum
Cosmarium formosulum
Xx subspeciosum
> leptocladum
polymorphum
Staurastrum gracile
4 leptacanthum
”

tetracerum
Desmidium swartzii

+

FEF EA EF AF+4++
+

AEROYO"LA"LEONERA

Gonatozigon monotaenium
Closterium acerosum

“y ehrenbergit
moniliferum

Staurodesmus subulatus

LAGUNA LA, POSADA

Gonatozigon aculeatum
brebissonúi
monotaenium
pilosum
Cylindrocystis brebissoni

crassa
Netrium digitus

interrumtum

digitus var. rectum

e A

+++

+++

+ +

Abril

Junio

Julio

Agosto

Septiembre
Octubre

+++

Noviembre

| Diciembre

--

++++

LAGUNA LA POSADA o
U
E
El
Netrium interruptum var. interruptum
f. minus
Closterium acerosum +
h aciculare +=
+ acutum
pa ehrenbergu Al
4 ehrenbergú var.
malinverntanum
dá libellula ale
ás pronum HE
Pleurotaenium ehrenbergi =-
E ovatum 3
e trabecula al
el truncatum
Euastrum ansatum +
ze denticulatum
o humbertú
a oblongum al
E validum var. glabrum 3+
Micrasterias radiosa var. ornata
f. elegantior -
dí denticulata ar
ds truncata 7
ÁActinotaentum cucurbitum
Cosmarium bioculatum
bioculatum var. depressum
de binum
k bipunctatum
É bireme E
de bireme var. huzeli
E blyttii Sl
sá depressum var. circulare
E laeve ele

laeve var. octangulare
melanosporum

Febrero

10

Marzo
Abril

+ +

+++

+++

Mayo

OS

Junio

+++

Julio

Agosto

Septiembre
Octubre

Noviembre
| Diciembre

+ EFE 4 4) + + +++

+++

EAGUNA: LA.POSADA

Mayo
Noviembre

Marzo
Septiembre
Octubre

| Febrero
Abril

Cosmarium minimum

monomazum var.
polymazum

obtusatum

ochthodes var. amoebum
ornatum

ovale

portianum
pseudoconnatum
pseudotinecense
punctulatum
speciosissimum
subspeciosum
subspeciosum var.
validius

subtumidum var. borgel
trilobulatum var.
bioculatum

ss venustum var. minus
Xanthidium antilopacum
Staurodesmus cuspidatus

dejectus

dickiet

mamillatus

patens

triangularis
Staurastrum alternans

asterias

asterioideum var. nanum
avicula

avicula var. subarcuatum
bieneanum

.dilatatum

furgicerum

gladiosum

| Diciembre

e | Enero
=

++ ++

+ E O Aa
+ 5 3

eh Gel
+ pS +

++

+++
+++

++ HF ++++

+++

208

LAGUNA LA-:POSADA

Enero

Febrero

Marzo

Staurastrum laeve

leptacanthum
orbiculare var.
depressum
polymorphum
polymorphum var.
cinctum

rotula

setigerum
sexcostatum var.
productum
spongiosum
striolatum
tetracerum
trifidum var. inflexum
vestitum

Hyalotheca dissiliens

”

mucosa

Bambusina brebissonii
Desmidium baileyi

”

cylindricum
swartzii

Teilingia granulatum

Sphaerozosma aubertianum

FEF IFRF+HO + ++

++

+++

+++

Noviembre
Diciembre

De las tablas dadas anteriormente se desprende que los géneros de
Desmidiáceas predominantes en la región de Concepción som: Cosmarium,
Staurastrum, Closterium y Euastrum, tanto en lo que se refiere al número de
taxa así como en la abundancia y distribución anual de ellos. Los géneros
Staurodesmus, Hyalotheca, Gonatozigon, Desmidium, Pleurotaenium y Micras-

terias, si bien es cierto son inferiores en número de taxa que presentan, tienen

especies que muestran una abundancia y amplia distribución en la región.

En cuanto al número de taxa que se encuentran en cada uno de los
lugares estudiados, existe una inmensa y notable variación, que es la siguiente:

A

N? DE TAXA

IA A 50
DALACGUNMASPTDISDA. Di. sa coicnicidinieesiarenicioicios 96
3. ANDABIENPE RRA. Mid eee ciannesoeneoa 35
his TAGITNA, LE) MENDEZ. ¿0055 Eerirparcmas 6
e o AEREA IA 14
== AREONTO EIA. :..orpicacnsroncinoiniomrosieco cost 5
¿=LACUNKE EXNPETUSADIA Dotocaatnots ercanesroassonaonicitón 94

En cuanto a ésto no deseo adelantar ningún juicio hasta terminar la
segunda etapa de esta investigación, que se refiere al estudio del resto de los
grupos de agua duce, así como la de los parámetros abióticos a que están
sujetos los diferentes habitats anteriormente analizados.

PARTE SISTEMATICA

Los géneros están ordenados de acuerdo a los criterios bastante conocidos
que siguen fundamentalmente a Krieger (1937). Debajo del género se ordenan
las especies, variedades y formas alfabéticamente.

Las dimensiones se dan en micrones. A continuación de las dimensiones,
y en algunos casos también de los comentarios, se encuentra el número corres-
pondiente a los habitats estudiados (1.— Andalién 1; 2.— Lag. Pineda; 3.— An-
dalién 2; 4.— Lag. Lo Méndez; 5.— Río Bío-Bío; 6.— Arroyo Leonera; 7.— Lag.
La Posada) con la abundancia relativa de los taxa (raro, escaso, y abundante) *
respectivamente. Por último se da la distribución conocida hasta el momento
para el país, en los taxa en que ha lugar.

ABREVIACION DE LAS DIMENSIONES.

long. cell. : Largo celular
lat. : ancho celular
Crass. : espesor celular
lat. isth.: ancho del istmo
lat. ap.: ancho del ápice
lat. ap. pol. : ancho del lóbulo polar
lat. bas. : ancho de la base
s. acul, : sin espina
S. proc. : sin apéndices o procesos
Cc. spin. : con espina
* raro = cuando los taxa aparecieron muy esporádicamente y en reducido número en las
muestras.
escaso cuando los taxa aparecieron más regularmente y en número apreciable.

abundante =— cuando los taxa aparecieron en gran cantidad y constantemente.

n=

SACCODERMAE

1.— Familia Mesotaeniaceae

CYLINDROCYSTIS Meneghini (1838)

Cyl. brebissonii Meneghini (1838) in Krieger (1937), p. 207, Lám. 6, Figs. 4-5.
long. cell. 40-48, lat. 14-16.5.
HABITAT. 7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Isla Desolación, Pto. Augusto
(Borge, 1906). (Fig. 1).

Cyl. crassa De Bary (1858) in Krieger (1937), p. 211, Lám. 6, Fig. 16.
long. cell. 27-30, lat. 13.
TAB RAD lamas

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 2).

NETRIUM (Nágeli) Itzigsohn et Rothe (1856)

N. digitus (Ehrenberg) Itzigsohn et Rothe (1856) in West et West (1904) p. 64.
long. cell. 140-170, lat. 58-65, lat. ap. 30-32.

ELABITAT 7 ESCasa:

DISTRIBCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los lagos Pi-
chilafquén, Todos Los Santos y Lanalhue; también en una charca cerca del

/

Lago Villarrica (Thomasson, 1963). (Fig. 3).

N. digitus var. rectum Krieger (1933), p. 216, Lám. 8, Fig. 2.
long. cell. 300-368, lat. 78-80.
HABITAT. 1: Tara.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En plancton Lago Pichilaf-
quén (Thomasson, 1963). (Fig. 4).

N. interruptum (Brébisson) Lútkemúller (1902), p. 395, 396, 404, 407; Geitler
(1937), p. 222, Lám. 8, Fig. 8.

long. cell. 136-170, lat. 30-42, lat. ap. 10-13.
HABITAT. 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 5).

LO —

N. interruptum var. interruptum f. minus (Borge) Kossinskaja (1952), p. 92,
Lám. 3, Figs. 5-7.

long. cell. 84-90, lat. 20-22, lat. ap..7-9,

HABITAT. 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 6).

2.— Familia Gonatozygaceae
GONATOZYGON De Bary (1856)

G. aculeatum Hastings (1892), p. 29, Fig. in text.

long. cell. 120-250, lat. 7-11, infra ap. 11-18, long. acul. 3-5.5,

DISCUSION: Es notable la gran diferencia de tamaño que se aprecia entre
los ejemplares, incluso aquellos encontrados en una misma muestra,
HABITAT. 1: abundante; 4: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Todos
Los Santos y Lago Pichilafquén (Thomasson, 1963). (Figs. 7 y 8).

G. brébissoni De Bary (1858), p. 77, Lám. 4, Figs. 26, 27.

long. cell. 120-140, lat. 6-7, lat. ap. 5.5. :

HABITAR. “> rara) 2: escasas 3: rara; 7: “abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 9).

G. kinahan: (Archer) Rabenhorst (1868) im West et West (1904), p. 35, Lám. 2,
Figs. 1-3.

long. cell. 240-280, lat. 12-13, lat. ap. 12-13.

HABITAT. b: rara.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 10).

G. monotaentum De Bary (1856) in West et West (1904), p. 30, Lám. 1, Figs. 1-5.
long. cell. 70-138, lat. 7-9, lat. ap. 8-10.

HABITAT. 1: abundante; 2: escasa; 3: escasa; 5: rara; 6: rara; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Pi-
chilafquén (Fhomasson, 1963) (Figs. 14, 15 y 16).

G. pilosum Wolle (1882) in West (1904), p. 34, Lám. 1, Figs. 19-20,

long. cell. 120-127, lat. 5.5-9, lat. ap. 6.5-10.

muestra.

- DISCUSION: Bastante variable en longitud, en ejemplares de una misma
HABITAT: 1: abundante; 2: abundante; 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Figs. 11, 12 y 13).

mos 7 PUN

PLACODERMAE

3. — Familia Desmidiaceae

CLOSTERIUM Nitzsch (1817)

Cl. acerosum (Schrank) Ehrenberg (1828), p. 164, Fig. 2 a, b, d-m.

long. cell. 415-570, lat. 38-40.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: abundante; 6: rara; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Extremo sur de Chile (Borge,
1901) en la provincia de Santiago (Espinoza, 1923) y (Solari, 1963) (Fig. 17).

Cl. aciculare T. West (1860) in Krieger (1937), p. 265, Lám. 13, Figs. 1, 2.
long. cell. 460-515, lat. 5-7.

HABITAT. 2: abundante; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE, En el plancton del Lago Todos
Los Santos, Panguipulli y Riñihue (Thomasson, 1963), en el plancton del Lago
Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971). (Fig. 44).

Cl. acutum Brébisson in Ralfs (1848), p. 177, Lám. 30, Fig. 5, Lám. 34, Fig. 5.
long. cell. 125, lat. 5.

HABITAT. ': rara.

No había sido citada anteriormente para Chile. Thomasson (1963) y Navarro
y Avaria (1971) citan la variedad Cl. acutum var. variabile para el plancton
de los Lagos Todos Los Santos y Peñuelas, respectivamente. (Fig. 45).

Cl. archerianum Cleve in Lundell (1871), p. 77, Lám. 5, Fig. 13.

long. cell. 210-220, lat. 19-22.

HABITAT. 1: rara.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Pi-
chilafquén (TPhomasson, 1963). (Fig. 22).

Cl. calosporum Wittrock (1869), p. 23, Lám. 1, Fig. 11.
long. cell. 75-112, lat. 8-13, lat. ap. 2-4.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante.
No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 25).

Cl. delpontei (Klebs) Wolle (1885), p. 2 in Bull. Torr. Bot. Club, vol. 12, Wolle

(1892), p. 45, Lám. 6, Fig. 9.
long. cell. 507-634, lat. 35-40.

— 28 =

HABITAT. 2: escasa.
No había sido citada anteriormente para Chile. (Figs. 34 y 35).

Cl. dianae Ehrenberg (1838), p. 92, Lám. 5, Fig. 17: Krieger (1937), p. 294,
Lám. 19, Figs. 9-11, Lám. 20, Fig. 1.
long. cell. 160-195, lat. 14-16, lat. ap. 2.5-3.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: abundante; 5: rara; 6: rara.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En Tierra del Fuego, Río Azo-
pardo (Borge, 1906) y en el plancton del Lago Todos Los Santos (Thomasson,
1963. (Figs. 26, 27, 28, 29, 30 y 31).

Cl. ehrenbergii Meneghini (1840) in Ralfs (1848), p. 166, Lám. 28, Fig. 2.
long. cell. 318-715, lat. 52-87.

HABITAT. 1: abundante; 3: abundante; 5: rara; 6: rara; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Prov. Magallanes (Borge, 1901).
para el plancton del Lago Panguipulli (Thomasson, 1955), en el plancton del
Lago Villarrica (Thomasson, 1963) y en charcas al lado del mismo Lago
(Thomasson, 1963). (Fig. 18).

Cl. ehrenbergii var. malinvernianum (De Notaris) Rabenhorst (1868), p. 131;
Krieger (1937), p. 287, Lám. 18, Fig. 2.

long. cell. 470, lat. 60.

"HABITAT. 5: rara.

No había sido citada anteriormente para nuestro país. (Figs. 19 y 20).

Cl. gracile Brébisson (1839) in Krieger (1937), p. 310, Lám. 30, Figs. 7, 8.
long. cell. 195-220, lat. 5-7.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: escasa; 4: rara.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile
(Borge, 1901), en la Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge, 1906). “Thomasson
(1963) cita una forma de la especie para el plancton del Lago Pichilafquén.
(Fig. 43).

Cl. kuetzingú Brébisson (1856) in Krieger (1937), p. 351, Lám. 32, Figs. 8, 9.
long. cell. 340-420, lat. 15.5-20, lat. ap. 3-3.5.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Para el extremo sur de Chile
(Borge, 1901) en el plancton del Lago Todos Los Santos (Thomasson, 1963).
(Figs. 38, 39 y 40).

Cl. libellula Focke in Krieger (1937), p. 254, Lám. 12, Figs. 1, 2.

long. cell. 220-300, lat. 36-44, lat. ap. 15.5.

HABITAT. 2: escasa; 7: escasa:

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Como Penium libellula (Focke)
Nordstedt en Tierra del Fuego, Río Azopardo, Isla Desolación (Borge, 1906).
Thomasson (1963) cita a Closterium libellula var. interruptum (West et West)
Donat para el plancton del Lago Pichilafquén (Figs. 36 y 37).

Cl. lineatum Ehrenberg (1835) in Ralfs (1848), p. 173, Lám. 30, Fig. 1. .
long. cell. 475, lat. 15, lat. ap. 6.5.

HABITAT: 32'Trara:

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el fitoplancton del Lago
Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971). (Figs. 32 y 38).

Cl. littorale Gay (1884), p. 75, Lám. 2, Fig. 17.
long. cell. 270-278, «lat. -17.5-20, lat. ap. 4.
HABETA PIT Fara!

No había sido citada anteriormente para nuestro país. (Fig. 42).

Cl. moniliferum (Bory) Ehrenberg (1838), p. 91, Lám. 5, Fig. 16; Krieger (1937),
p. 289, Lám. 18, Figs. 6, 7.

long. cell. 220-380, lat. 37-65.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: abundante; 5: abundante; 6: abun-

dante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Para el extremo sur de Chile

(Borge, 1901), para la provincia de Santiago (Solari, 1963), en un charco al

lado del Lago Villarrica (Thomasson, 1963). (Fig. 21).

Cl parvulum Nágeli (1849), p. 106, Lám. 6c: 2; Krieger (1937), p. 275, Lám. 16,
Figs. 14-17.

long. cell. 117-125, lat. 14-16.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Extremo sur de Chile (Borge,

1901) y para Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge, 1906). (Fig. 23).

Cl. parvulum var. angustum West et West (1900), p. 290, Lám. 412, Fig. 8.
long: cell...72, lat...6.5-7.

HABITAT. 2: rara.
No había sido citada anteriormente para el país. (Fig. 24).

==

Cl. pronum Brébisson (1856), p. 157, Lám. 2, Fig. 42.

long. cell. 175-170, lat. 6-7.

HABITAT. 1: escasa; 2: escasa; 7: rara.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile
(Borge, 1901). (Fig. 41).

Cl. tuwrgidum Ebrenberg (1838), in Ralfs (1848), p. 165, lám. 27, Fig. 3.
long. cell. 800-995, lat. 75-83.

HABITAT. 1: escasa; 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Figs. 46 y 47).

PLEUROTAENIUM Nágeli (1849)

Pl. ehrenbergii (Brébisson) De Bary (1858), p. 75; Krieger (1937), p. 410,
Lám. 42, Figs. 4-8.

long. cell. 285-500, lat. 26-42, lat. ap. 15-17.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: escasa; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile

(Borge, 1901), en el plancton de los Lagos Todos Los Santos y Pichilafquén

y en pozas al lado del Lago Pellaifa (Thomasson, 1963). (Fig. 51).

Pl. ehrenbergit var. undulatum Schaarschmidt (1884), p. 278, Fig. 21d; Krieger
E 19S7), py 415, Lám. 43, Figs; 24

long. cell. 327-650, lat. 22-41, lat. ap. 15.5-26.5.

HABITAT. 1: rara; 2: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Pe-
llaifa (Thomasson, 1963). (Fig. 52).

Pl. ovatum Nordstedt (1877), p. 18; Krieger (1937), p. 434, Lám. 50, Fig. 1.
long. cell. 320-410, lat. 70-110, lat. ap. 30-35.5,

HABITAT. 2: abundante; 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 48).

Pl. trabecula (Ehrenberg) Nágeli (1849), p. 104, lám. 6:a; Krieger (1937), p. 395,
Lám. 40, Figs. 1-4.

long. cell. 220-413, lat. 23.5-27, lat. ap. 15-16.5.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: escasa; 7 abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Pe-

Jlaifa, Llanquihue, Pichilafquén, “Todos Los Santos y Lanalhue (Thomasson,
1963). (Fig. 49).

a

Pl. trabecula var. rectum (Delpin) West et West (1904), p. 212, Lám. 30,
Figs. 9, 10.

long. cell. 180-190, lat. 13-15.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 50).

Pl. truncatum (Brébisson) Nágeli (1849), p. 104; Krieger (1937), p. 430, Lám. 49,
Figs: 2, 3.

long. cell. 370-480, lat. bas. 40-61, lat. ap. 30-36.5.

HABITAT. 2: escasa; 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 53).

EUASTRUM Ehrenberg (1832)

E. abruptum Nordstedt var. subglaziowit (Borge) Krieger (1937), p. 606,
Lám. 83, Figs. 7, 8.

long. cell. 38-41, lat. 25-28.5, lat. ap. 18-21, lat. isth. 6-7.5.

HABITAT. 2: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Figs. 54 y 55).

E. acanthophorum Turner (1892), p. 82, Lám. 10, Fig. 53; Krieger (1932),
p. 210, Lám. 20, Fig. 6.

long. cell. 38, lat. 19, lat. isth. 9,

HABITAT. 2: rara.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 63).

E. ansatum Ehrenberg (1832), p. 82; Kossinskaya (1960), p. 337, Lám. 44,
Fig. 1-7 (incl. var. dideltiforme Ducellier); Forster (1970), p. 299, Lám. 10,
Fig. 2.

long. cell. 95-137, lat. 47-72, lat. ap. 26-28, lat. isth. 12-15.5,

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 3: abundante; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago

Pichilafquén (Thomasson, 1963). (Fig. 68).

E. bidentatum Nágeli (1849), p. 122, Lám. 7d: 1, af; Krieger (1937), p. 601,
Lám. 85, Figs. 2-7 (incl. var. speciosum (Boldt) Schmidle); Fórster (1970),
p. 300, Lám. 10, Figs. 25, 26.

long. cell. 40-45, lat. 26-31, lat. ap. 17-20, lat. isth. 6-8.5.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile (Figs. 56 y 57).

TA

E. binale (Purpin) var. parallelum Hirano (1959), p. 230, Lám. 37, Fig. 10.
long. cell. 18, lat. 12, lat. ap. 8, lat. isth. 3-4,

HABITAT. 1: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. Borge (1901, 1906) cita la es-
pecie típica para el extremo sur de Chile. (Fig. 66).

E. denticulatum (Kirchner) Gay (1884), p. 335; Krieger (1937), p. 583, Lám. 80,
Figs. 15-17.

long. cell. 18-21, lat. 15-16, lat. ap. 10-11, lat. isth. 6-6.5.

HABITAT. 1: escasa; 2: escasa; 3: rara; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Tierra del Fuego, Río Azo-

pardo, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge, 1906). (Fig. 62).

E. didelta Ralfs (1844), p. 190, Lám. 7, Fig. 2.

long. cell. 110-135, lat. 55-71, lat. ap. 21-22, lat. isth. 13-14.5.
HABITAT. 2: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 64).

E. dubium Nigeli (1849), p. 122, Lám. 7, Fig. 2; Krieger (1937), p. 571, Lám. 79,
Figs. 1-5.

long. cell. 25-27.5, lat. 17-19, lat. ap. 11-12, lat. isth. 5-7.5.

HABITAT. 3: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Todos

Los Santos (Thomasson, 1963. (Fig. 61).

E. elegans (Brébisson) Kiitzing (1845). p. 135; Krieger (1937), p. 591, Lám. 81,
Figs. 14-18.

long. cell. 29-36.5, lat. 19-23.5; lat. ap. 14-15, lat. isth. 6-7.

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 65).

E. evolutum (Nordstedt) West et West (1896), p. 243, Lám. 14, Fig. 22.
long. cell. 47-56.5, lat. 31-38, lat. ap. 20-28, lat. isth. 6-10.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 58).

E. evolutum var. glaziowii (Borge) West et West (1897), p. 292; Krieger (1937),
p. 615, Lám. 88, Figs. 1-3.

long. cell. 54-56, lat. 35-87, lat. ap. 21-22, lat. isth. 21-22.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 59).

«li

E. evolutum var. perornatum Scott et Crosdale in Scott. Grónblad et Croasdale
(1965), p. 32, Lám. 4, Fig. 74.

long. cell. 41.5-52.5, lat. 31-38.5, lat. ap. 24-28.5, lat. isth. 8-10.5.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 60).

E. gemmatum Brébisson in Ralfs (1844), p. 191, Lám. 7, Fig. 4.
long. cell. 47-66, lat. 38-48, lat. ap. 18-20, lat. isth. 9.5-14.
HABITAT. l: escasa; 2: escasa: 3: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 72).

E. humbertii Bourrelly et Leboine (1844), p. 91, Lám. 2, Figs. 24-27.
long. cell. 31.5, lat. 22-23, lat. ap. 12-14, lat. isth. 9.
HABITAT. 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 67).

E. johnsonii West et West (1897), p. 288, Lám. 16, Fig. 9; Krieger (1937).
p. 542, Lám. 73, Figs. 20-21.

long. -cell. 72-82, lat. 44-47, lat. ap. 17-19.5, lat. isth. 14-15.5.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 69).

E. oblongum (Greville) Ralfs (1844), p. 189, lám. 6, Fig. 4: Krieger (1937),
p. 526, Lám. 70, Figs. 3-6.

long. cell. 145-170, lat. 75-98, lat. ap. 37-48, lat. isth. 20-31.

HABITAT. 5: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Figs. 70 y 71).

E. spinulosum Delponte (1876), p. 97, Lám. 6, Figs. 17, 18; Krieger (1937),
p. 633, Lám. 93, Figs. 1-3.

long. cell. 51-72.5, lat. 45-64.5, lat. ap. 18-24.5, lat. isth. 9-13.5.

HABITAT. 1: escasa: 2: abundante; 3: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 73).

E. validum West et West var. glabrum Krieger (1937), p. 547, Lám. 74,
Figs. 21, 22.

long. cell. 26-31, lat. 19-23, lat. ap. 12-13, lat. isth. 6-7.6.

HABITAT. 5: rara.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Figs. 74, 75 y 76).

Bb Ñ

MICRASTERIAS Agardh (1827)

M. radiosa Ralfís var. ornata Nordstedt f. elegantior G.S. West (1914), Lám. 22,
Fig. 44.

long. cell. 141-152, lat. 126-148, lat. isth. 10-16, lat. lob. pol. 22-23.

HABITAT. 2: abundante; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Como Micrasterias sol var.

ornata Nordstedt en el plancton del Lago Pichilafquén y Micrasterias sol

var. elegantior (G.S. West) Grónblad en el plancton del mismo Lago (Tho-
masson, 1963). (Fig. 78).

M. denticulata Brébisson (1835), p. 54, Lám. 8: Krieger (1939), p. 105, Lám. 137,
Figs. 3-6.

long. cell. 190-280, lat. 200-278, lat. isth. 25-33.

HABITAT. 1: escasa: 2: abundante: 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago To-
dos Los Santos (Thomasson, 1963). (Fig. 77).

M. truncata (Corda) Brébisson in Ralfs (1848), p. 75, Lám. 8, Fig. 4, Lám. 10,
Fig. 5.

long. cell. 60-70, lat. 65-71, lat. isth. 12-16.5, lat. lob. pol. 42-52.

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 3: rara; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos

Pellaifa, Villarrica, Lanalhue, Todos Los Santos y en un charco cerca del Lago

Pellaifa (Thomasson, 1963). (Fig. 79).

ACTINOTAENIUM (Nigeli) Teiling (1954)

Act. cucurbitum (Bisset) Teiling (1954), p. 339, Fig. 36, 39 in p. 405.
long. cell. 56, lat. 28.5, lat. isth. 25.

HABITAT. 7: rara.
No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 80).

Act. minutissimum (Nordstedt) Teiling (1954). p. 408, Fig. 34 in p. 398.
long. cell. 19, lat. 10, lat. isth. 8.

HABITAT. 2: rara.
No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 81).

5: —Á

COSMARIUM Corda (1834)

C. bioculatum Brébisson in Ralfs (1848), p. 95, Lám. 15, Fig. 5; West et West
(1905), p. 165, Lám. 61, Figs. 3, £

long. cell. 9-13, lat. 9-14, lat isth. 4-7.

DISCUSION: Especie bastante escasa, hay que hacer notar la diferencia de

tamaño, con los ejemplares de West et West (1905), p. 165, y los de Fórster

(1969), p. 45.

HABITAT. 2: rara; 7: rara.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En la prov. de Santiago

(Solari, 1963). (Fig. 84).

C. bioculatum var. depressum (Schaarschmidt) Schmidle (1894) in Flora, p. 51.
long. cell. 13-15, lat. 14-16, lat. isth. 4-6.

HABITAT. 12 escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 85).

C. binum Nordstedt in West et West (1908), p. 246, Lám. 88, Figs. 10-14.
long. cell. 70-91, lat. 48-65, lat. isth. 14-20.
HABITAT. 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 116).

C. bipunctatum Bórgesen (1890), p: 40, Lam. 4 Fig. 33:
long. cell. 21, lat. 20, lat. isth. 6-6.5.
HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 111).

C. bireme Nordstedt (1869), p. 212, Lám. 3, Fig. 33; West et West (1908),
Pp 77, Lim. 71; Fios. 36,37.

long. cell. 15-16, lat. 12-13, lat. isth. 4.

DISCUSION: Mis ejemplares se acercarían más a C. bireme var. rotundatum

West et West, debido a su tamaño y forma de la célula, desgraciadamente la

escasa presencia no permitió aclarar mayormente este asunto.
HABITAT. 1: rara:
No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 98).

C. bireme var. huzelii Fórster (1969), p. 45, Lám. 14, Figs. 11-12.
long. cell. 13-15, lat. isth. 3.5-4, lat. 14-15.5.

HABITAT. 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 99).

IA

C. blyttii Wille (1880) in Migula (1907), p. 475; West et West (1908), p. 25
Lám. 86, Figs. 1-4.

long. cell. 15-17, lat. 13-14, lat. isth. 4-5.

HABITAT. 3: abundante; 7: abundante.

La especie no había sido citada anteriormente para Chile. Thomasson (1963,

p. 68), cita a C. blytti var. novae-sylvae West et West, la que es de mayor
tamaño que la especie típica y sólo con una serie de gránulos dentro de los

márgenes.

C. circulare Reimsch (1867), p. 113, Lám. 82, Figs. 1-4; West et West (1905),
p. 136, Lám. 33, Figs. UL, 13, 14

long. cell. 50-60, lat. 50-52.5, lat. isth. 12-13.

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 4: rara.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 87).

C. circulare var. minus Hansgirg (1888), p. 249; Krieger et Gerloff (1962),
p 2 Lám. 1, Fig. 4

long. cell. 27-30, lat. 20-22, lat. isth. 6-7.

HABITAT. 4: rara.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 88).

C. connatum Brébisson im Ralfs (1848), p. 108, Lám. 17, Fig. 10.

long. cell. 65-82, lat. 48-75, lat. isth. 34-67.

HABITAT: 2:. escasa;

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago “Todos
Los Santos y en una charca al lado del Lago Villarrica (Thomasson, 1963).

(Fig. 121).

C. contractum Kirchner (1878), p. 147; West et West (1905), p. 170, Lám. 61,
Figs. 23-25, 34; Krieger et Gerloff (1962), p. 71, Lám. 12, Figs. 16-18.

long. cell. 26.5-30.5, lat. 18-25, lat. isth. 7-8.

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Extremo sur de Chile (Borge,

1901). (Fig. 83).

C. depressum (Nágeli) Lundell (1871), p. 38; West et West (1905), p. 576,
Lám. 62, Figs. 2-5; Krieger et Gerloff (1962), p. 20, Lám. 8, Fig. 1.
long. cell. 45-48, lat. 45-47, lat. isth. 12-14.

HABITAT. 2: escasa.
No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 89).

a

C. depressum var. circulare Krieger et Gerloff (1962), p. 22, Lám. 8, Fig. 4.
long. cell. 31.5, lat. 20-22, lat. isth. 7.5.

ABAD SMesScasa:

No había sido citada para Chile (Fig. 90).

C. dichondrum West et West (1895), p. 65; Hirano (1957), p. 186, Lám. 27.
Fig. 20.

long. cell. 24-28, lat. 22-24, lat. isth. 9.

DISCUSION: Mis ejemplares son un poco más grandes, pero las demás carac-

terísticas concuerdan con la descripción de West et West (op. cit.) y con la

de Hirano (op. cit.).

HABITAT ONE escasas 2: namas O ratas

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 103).

C. difficile Liitkemiiller (1892), p. 551, Lám. 8, Fig. 3; West et West (1908),
p: 96, Lam. 737 Elgs. 1-3.

long. cell. 23.5-26.5, lat. 18-22, lat. isth. 5-6.

ETABIMAIS 1ESrara:

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En un charco cerca del Lago

Villarrica (Phomasson, 1963). (Fig. 96).

C. formosulum Hoff in Nordstedt (1888), p. 194, Láms. 6, 7; West et West
(1908), p. 240, Lám. 88, Figs. 1-3.

long. cell. 32-34, lat. 25-26, lat. isth. 8-9.

DISCUSION: Mis ejemplares son de mayor tamaño que los dados por West

et West (op. cit).

ELABIIPA O rara:

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 117).

C. isthmochondrum Nordstedt (1873), p. 12, Lám. 1, Fig. 2; West et West
(L908):* ps 173, Eam. 8L, Mig. ”7.

long. cell. 28-29.5, lat. 26, lat. isth. 7-8.

HABITAT. 15 abundante; 2: rara.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 102).

C. laeve Rabenhorst (1868), p. 161; West et West (1908), p. 99, Lám. 73,
Pipo, 12, 1% 16, 17.

long. cell. 18-22, lat. 15-17, lat. isth. 4-5.5.

HABITAT. l: escasa; 2: rara; 3: abundante; 4: rara; 7: rara.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur del país

(Borge, 1901), en el plancton del Lago Villarrica (Fhomasson, 1963). (Fig. 93).

AA

C. laeve var. octangulare (Wille) West et West (1908), p. 101, Lám. 73, Fig. 20.
long. cell. 25, lat. 19.5, lat. isth. 4.5-5,
HABITAT. 7: rara.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 94).

C. lobatum Bórgesen var. minus (Smith) Grónblad (1945), p. 19, Lám. 6
Fig. 124.

long. cell. 30-35, lat. 23-25, lat. isth. 7-8, papila = 1.

ABPTAT. 2: Tara.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 100).

,

C. melanosporum Archer (1883), p. 124; West et West (1905), p. 162, Lám. 60,
Figs. 21-23.

long. cell. 12-13, lat. 10-11, lat. isth. 4.5-5,

HABITAT! 7. Tara

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 86).

C. minimum West et West (1895) p3158, Lám. 8, Fig. 10; West et West
(1908), p. 66, Lám. 71, Figs. 1, 2.

long. cell. 8-10, lat. 7-8, lat. isth, 3-4.

HABITAT. 'E escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 82).

C. monomazum Lundell var. polymazum Nordstedt (1873), p. 14, Lám. 1,
Fig. 3; West et West (1908), p. 140, Lám. 76, Figs. 13-14.

long. cell. 31-47, lat. 34.5-50, lat. isth. 9.5-14.

HABITAT. 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 101).

C. obtusatum Schmidle (1898), p. 38; West et West (1908), p. 7, Lám. 65,
Ejes, 13, 14.

long. cell. 45-49.5, lat. 36-38.5, lat. isth. 12-13.

HABITAT. 2: escasa; 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 106).

C. ochthodes Nordstedt var. amoebum West (1892), p. 728; West et West (1911),
p. 11, Lám. 98, Figs. 4-6.

long. cell. 76-85, lat. 50-61, lat. isth. 15-17.5.

HABITAT. 3: rara; "/escasas

e le

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Todos
Los Santos (T'homasson, 1963). (Fig. 105).

Eomatum Ralís (1840 3p. 392, (Lámóá, Fig. 3.

long. cell. 30-35, lat. 30-34, lat. isth. 10-15.

HABITAT. 2: abundante; 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 104).

C. orthostichum Lundell var. pumilum Lundell (1871), p. 25, Lám. 2, Fig. 10.
long. cell. 22:23, lat. 21-22, lat. 15th. 8-9.

HABITAT. 2: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 107).

C. ovale Ralfs (1848), p. 98, Lám. 15, Fig. 9.

Jong. cell. 175-210, lat. 110-128, lat. isth. 25-31,
HABITAT. 2: abundante; 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 112).

C. portianum Archer (1860), p. 49, Lám. 1, Figs. 8, 9; West et West (1908),
p- 165, Lám. 80, Figs. 47.

long. cell. 30-34.5, lat. 23.5-27, lat. isth. 8-9.5.

HABITAT. 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos

Pellaifa, Todos Los Santos y Pichilafquén (TPhomasson, 1963). (Fig. 108).

C. pseudoconnatum Nordstedt (1869), p. 124, Lám. 3, Fig. 17.

long. cell. 50-62.5, lat. 38-44, lat. isth. 32-38,

HABITAT. 1: escasa; 2: escasa; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos
Lanalhue, Pellaifa y en un charco al lado del Lago Villarrica (Phomasson,
1963). (Fig. 120).

C. pseudopyramidatum Lundell (1871), p. 41, Lám. 2, Fig. 18.

long. cell. 55-62.5, lat. 35-41, lat. isth. 8-11.5.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En un charco cerca del Lago
Villarrica (Phomasson, 1963). (Fig. 119).

C. pseudotinecense Grónblad (1921), p. 42, Lám. 7, Fig. 61.
long. cell. 105-135, lat. 42-51, lat. isth. 38-47.

e Me

HABITAT. 7: abundante.

DISCUSION: Aunque en la descripción del autor nada se dice sobre la estruc-
tura de los poros, es interesante hacer notar la diferencia en tamaño de éstos;
al respecto la descripción de Krieger y Gerloff (1969, p. 360) nada dice.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 118).

C. punctulatum Brébisson (1856), p. 129, Lám. 1, Fig. 16; West et West (1908),
p. 206, Lám. 84, Fig. 13-14.

long. cell. 26-29, lat. 22-24, lat. isth. 5-8.

HABITAT. 1: escasa; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile

(Borge, 1901), en la prov. de Santiago (Solari, 1963), y en un charco al lado

del Lago Villarrica (1 homasson, 1963). (Fig. 110).

C. quadrum Lundell (1871), p. 25, Lám. 2, Fig. 11; West et West (1911), p. 20,
Lám. 100, Figs. 3-6.

long. cell. 55-60, lat. 50-55, lat. isth. 15-16,

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En un charco al lado del Lago

Villarrica (Ihomasson, 1963). (Fig. 109).

C. speciosissimum Schmidle (1895), p. 458, Lám. 15, Figs. 30-31.
long. cell. 47-52, lat. 32-35, lat. isth. 12-16.5.

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 3: escasa; 7: abundante.
No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 113).

C. subspeciosum Nordstedt (1875), p. 22, Lám. 6, Fig. 13.
long. cell. 34.5-54, lat. 24-46, lat. isth. 8-10.5.

HABITAT. 1: abundante; 5: escasa; 7: abundante.
No había sido citada anteriormente para Chile.

C. subspeciosum var. validius Nordstedt (1887), y. 160; West et West (1908),
p. 253, Lám. 89, Figs. 12, 13.

long. cell. 76-80, lat. 50-54, lat. isth. 17-20.

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 3: abundante; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur del país

(Borge, 1901), en el plancton de los Lagos Pellaifa, Lanalhue, Todos Los Santos,

Pichilafquén, Llanquihue y en charco cerca del Lago Villarrica (Thomasson,

1963). (Fig. 115).

si

C. subprotumidum Nordstedt (1876), p. 38, Lám. 12, Fige014.

long. cell. 28-30, lat. 22-24, lat. isth. 6-7.

HABITAT. $: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En un charco al lado del Lago
Villarrica (Thomasson, 1963). (Fig. 114).

C. subtumidum Nordstedt var. borgei Krieger et Gerloff (1965), p. 163, Lám. 34,
Esp. 1.

long. cell. 27, lat. 22, lat. isth. 6-6.5.

HABITAT. 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 91).

C. trilobulatum Reinsch. var. bioculatum Krieger (1932), p. 189. Lám. 10,
Pip. 2/-

long. cell. 26-29, lat. 21-23, lat. isth. 8-10.

HABITAT. l: escasa; 2: escasa; 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 97).

C. venustum (Brébisson) Archer var. minus (Wille) Krieger et Gerloff (1965),
p. 201, Lám. 38, Fig. 14.

long. cell. 19-21, lat. 13-14.5, lat. isth. 5-6.

HABITAT. 5: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 92).

XANTHIDUM (Ebrenberg, (1837)

X. antilopaeum (Brébisson) Kútzing (1849), p. 177; West et West (1911), p. 63,
Lám. 108, Figs. 7-18.

long. cell. s. acul. 48-59, long. cell. c. acul. 64-92, lat. s. acul. 47-58, lat. c. acul.
66-86, lat. isth. 9-16, long. acul. 10-17.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: escasa; 5: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos
Todos Los Santos, Villarrica, Pichilafquén, Pellaifa y Laguna Chica de San

Pedro, además en un charco cerca del Lago Pellaifa (Thomasson, 1963).
(Fig. 122).

E

STAURODESMUS Teiling (1948)

Std. convergens (Ehrenberg) Teiling.

long. cell. 32-38.5, lat. s. acul. 31-40, lat. isth. 8-10, long. acul. 11-14.
HABITAT. 2: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Vi-
llarrica, Todos Los Santos y Pichilaftquén, también en una poza cerca del Lago
Pellaifa (Thomasson, 1963), además el mismo autor cita una forma en el
plancton del Lago Pichilafquén. (Fig. 123).

Std. cuspidatus (Brébisson) Teiling (1948), p. 60.

long. cell. 23-25.5, lat. s. acul. 18-20, lat. isth. 5-6.5, long. acul. 7-8.5.
HABITAT. 2: escasa; 5: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos
Pichilafquén, Llanquihue, Todos Los Santos y Laguna Chica San Pedro (Tho-
masson, 1963). (Fig. 125).

Std. dejectus (Brébisson) Teiling (1954), p. 128; Fórster (1969), p. 68, Lám. 30,
e ad

long. cell. 22.5-24, lat. s. spin. 25-27, lat. isth. 5.5-6,

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos

Todos Los Santos, Pichilafquén y Peilaifa, y también en una charca cerca del

¿

Lago Pellaifa (Thomasson, 1963). (Fig. 131).

Std. dickier (Ralfs) Lillieroth, 1950, p. 264.

long. cell. 25-30, lat. s. spin. 30-34, lat. isth. 10-12.5, long. spin. 10-12,
HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 3: rara; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En un charco, cerca del Lago
Pellaifa (Thomasson, 1963). El mismo autor cita 2 variedades y una forma en
diferentes lagos del sur de Chile (Figs. 126 y 127).

Std. extensus (Anderson) Teiling (1948), p. 67; Fórster (1969), p. 69, Lám. 30,
Figs. 12-14.

long. cell. s. spin. 22-24, lat. s. spin. 20-23, lat. c. spin. 42-46, lat. isth. 6-8,

long. spin. 12-13.5.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 124).

Std. mamillatus (Nordstedt) Teiling (1967), p. 536; Forster (1969), p. 69,
Lám.-30;, Figs. 12-14.

long. cell. s. spin. 19-23, lat. s. spin. 19-22, lat. c. spin. 28.5-32, lat. isth. 6-8.5,

long. spin. 6-8.5

HABITAT. Ll: xara; 23 escasas: rara; /. Escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 128).

Std. patens (Nordstedt) Croasdale (1957), p. 134, Lám. 2, Figs. 32, 38,
long. cell. 24-28.5, lat. 23-27.5, lat. isth. 6-8, long. spin. 3-4,

DISCUSION: Mi ejempiar es algo más grande.

HABITAT. 7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago “Todos
Los Santos (Ihomasson, 1963). (Fig. 132).

Std. subulatus (Kútzimg) Croasdale.

long. cell. 30-37, lat. 24-26.5, lat. isth. 6-7, long. spin. 22-24,

HABITAT. 6: rara.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos

Pichilafquén y Todos Los Santos y en la Laguna Chica de San Pedro (Lho-

masson, 1963). (Fig. 130).

Std. triangularis (Lagerheim) Teiling (1948), p. 62; Forster (19 pi
amo 291850, 7.

long. cell. 26.5-28.5, lat. s. spin. 22-28, lat. c. spin. 40-51, lat. isth. 6-7.

HABITAT. 7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. La especie típica no había

sido citada para nuestro país. Eso sí que “IT homasson, cita una serie de facie y

variedades para los Lagos del sur del país. (Fig. 129).

STAURASTRUM Meyen (1929)

St. altenans Brébisson in Ralfs (1848), p. 132, Lám. 21, Fig. 7.

long. cell, 21-23, lat. c. proc. 26-28, lat. isth. 8-9.

EHABLDAT. dE escasa:

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de un charco
al lado del Lago Pellaifa (Thomasson, 1963). (Fig. 139).

St. asterias Nygaard in Krieger (1932), p. 193.
long. cell. s. proc. 27-33, lat. c. proc. 33-38, lat. isth. 7-9.

HABITAT. 2: escasa; 7: escasa.

En

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos
Pichilafquén y Villarrica (Phomasson, 1963). (Fig. 156).

St. asterioideum West et West var. nanum (Wille) Grónblad (1948), p. 418,
Figs. 29,30.

long. cell. 20-21, lat. c. proc. 25, lat. isth. 5-6.

HABITAT. 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 149).

St. avicula Brébisson in Ralfs (1848), p. 140, Lám. 3, Fig. 1; West, West et

Carner (1923), p. 40, Lám. 133, Figs. 8-10, ps

long. cell. 32, lat. s. acul. 42, lat. isth. 12.

HABITAT. 7: escasa.

DISCUSION: Pareciera corresponder a la forma de Thomasson (1963), p. 114,
Lám. 42, Figs. 17,18!

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 154).

St. avicula var. subarcuatum (Wolle) West et West (1894), p. 10; West et Carter
(ADS) po tL, Lám. 133, Fig. UL

long. cell. 22.5-23, long. s. acul. 25.5-27, lat. isth. 7-8.

HABITAT. 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 153).

St. bieneanum Rabenhorst (1862); West et West (1911), p. 135, Lám. 120,
Figs. 4-6.

long. cell. 27-35, lat. 24-28, lat. isth. 6-8.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: escasa; 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 136).

St. brevispinum Brébisson in Ralfs (1848), p. 124, Lám. 34, Fig. 7a, 7b.
long. cell. 28-34.5, lat. 26.5-28, lat. isth. 7-8.

HABITAT: 22. escasa;¡.3: ¡escasa!

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Conocida para el extremo sur
de Chile (Borge, 1901). (Fig. 137).

St. chaetopus Hinode (1967), p. 80, Lám. 3, Fig. 10.
lang? cell: e prog. 45, late. proc. 42, lat. isth. 4.555.

HABITAT. 4: abundante.
No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 160).

Ns

St. dilatatum Ehrenberg in Ralfs (1848) 1p: 118, Lám.: 21, Fig 38:

long. cell. 21-23.5, lat. 22-24.5, lat. isth. 7.5-9.5.

HABITAT. 1: abundante; 2: escasa; 7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Pe-
llaifa y en una poza al lado del Lago Villarrica (Phomasson, 1963). (Fig. 142).

St. disputatum West et West var. extensum (Borge) West et West (1911), p. 177,
Lám. 26, Fig. 17.

long. cell. 19-20, lat. 19-21, lat. isth. 6-6.5.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 138).

St. jurcigerum Brébisson in Meneghini (1840), p. 226; West et West et Carter
(1923), p. 188, Lám. 156, Figs. 7, 11.

long. cell. s. proc. 37-41, c. 60-67, lat. c. proc. 51-57, lat. isth. 12-13.

HABITAT. 2: escasa; 7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile

(Borge, 1901), en el plancton del Lago Roca (Thomasson, 1955). (Fig. 155).

St. gladiosum Turner in West, West et Carter (1923), p. 57, Lám. 137, Figs. 1-2.
long. cell. s. acul. 32-38, c. acul. 36-45, las. s. acul. 38-41, lat. isth. 8-10.
HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago To-

dos Los Santos y en un charco al lado del Lago Pellaifa (Thomasson, 1963).
(Fig. 143).

St. gracile Ralfs (1845), p. 155, Lám. 11, Fig. 3; (1848), p. 136, Lám. 22, Fig. 12.
long. cell. 37-52, lat. c. proc. 70-92, lat. isth. 7-11.5.
HABITAT. 5: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 159).

St. laeve Ralfs (1848), p. 131, Lám. 23, Fig. 10.

long. cell. s. proc. 20-22.5, c. proc. 28-30.5, lat. c. proc. 30, lat. isth. 8-9.
HABITAT. 2: escasa; 7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Pi-
chilafquén (Thomasson, 1963). (Fig. 164).

St. leptacanthum Nordstedt in West (1898), p. 319; Hirano (1959), p. 380,
Lám. 51, Fig.9,

long. cell. s. proc. 30-40, c. proc. 54-61, lat. s. proc. 27-34, c. proc. 49-74.5,

lat. isth. 11-13.5.

LAA

HABITAT. 5: rara; 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 165).

St. leptocladum Nordstedt in Wolle (1884), p. 136; Hirano (1959), p. 377.
Lám. 50, Fig. 6.

long. cell. c. proc. 36.5-38.5, lat. s. proc. 23-25, lat. c. proc. 93.5-98, lat. isth. 7-8.

HABITAT. 5: rara.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Pe-

ñuelas (Navarro y Avaria, 1971). (Fig. 163).

St. longipes (Nordstedt) Teiling.
long. cell. s. proc. 22-24, c. proc. 47-64, lat. c. proc. 97-100, lat. isth. 7-8.5.
HABITAT. 4: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 161).

St. manfeldtii Delpin var. annulatum West et West (1902), p. 56, Lám. 1.
Fig. 30-31. 5

long. cell. s. proc. 50-54, lat. c. proc. 70-75.5, lat. isth. 11-12.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 162).

St. muticum Brébisson (1840) in West et West (1911), p. 133, Lám. 118,
Figs. 16-18.

long. cell. 21-22, lat. 20-22, lat. isth. 6-6.5.

HABITAT. 2: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile

(Borge, 1901), y en el plancton de los Lagos Todos Los Santos y Pellaifa
(Thomasson, 1963). (Fig. 133).

St. orbiculare Ralfs in West et West (1911), p. 155, Lám. 124, Figs. 10-11.
long. cell. 30-33, lat. 23-29, lat. isth. 7-7.5.
HABITAT. 2: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile
(Borge, 1901). (Fig. 134).

St. orbiculare var. depressum Roy et Bisset (1886), p. 237, Lám. 268, Fig. 14.
long. cell. 24.5-26, lat. 24-25, lat. isth. 6.5-7.

HABITAT. 7: escasa.
No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 135).

a Y

St. pinnatum Turner var. reductum Krieger (1932), p. 204, Lám. 6, Fig. 9.
long. cell. 28.5-30, lat. c. proc. 33-34.5, lat. isth. 12-13.

HABITAT. 2: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 148).

St. polymorplum Brébisson in Ralfs (1948), p. 135, Lám. 22, Fig. 9, Lám. 34,
Fig-06.

long. cell. 23-31.5, lat. c. proc. 30-45, lat. isth. 7-11.5.

HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 5: escasa; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur del país

(Borge, 1901). (Fig. 150).

St. polymorphum var. cinctum Messikormer; Grónblad et Croasdale (1971),
p: 22. Figs: 129, 130.

long. cell. 32-54, lat. c. proc. 38-40.5, lat. isth. 8.5-10.

HABITAT. 2: abundante; 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile (Fig. 151).

St. punctulatum Brébisson in Ralfs (1848), p. 133, Lám. 22, Fig. 1.
long. cell. 24-26.5, lat. isth. 9-10.

HABITAT. 1: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile
(Borge, 1901), en el plancton del Lago Todos Los Santos y en una charca
cerca del Lago Villarrica (Thomasson, 1963). (Fig. 140).

St. quadrangulare Brébisson in Ralfs (1848), p. 128, Lám. 22, Fig. 7, Lám. 34,
Expo dls

long. cell. 26-28, lat. 20-22.5, lat. isth. 5-6.

HABITAT. 1: abundante: 2: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 145).

St. quadrangulare var. contectum (Turner) Grónblad (1945), p. 29, Lám. 12,
Fig, 59,

long. cell. 30-32.5, lat. 25-27, lat. isth. 9-10.

HABITAT. 1: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton del Lago Pe-

llaifa y en charcos cerca del mismo lago (Thomasson, 1963). (Fig. 146).

St. rotula Nordstedt (1870), p. 227, Lám. 4, Fig. 38.
8-radiado: long. cell. s. verr. 31-34.5, lat. s. proc. 20-22, c. 54-70, lat. isth. 10-13.
9-radiado: long. cell. s. verr. 38-40.5, lat. s. proc. 20-23.5, c. 67-70.5, lat. isth.
9,5-11,5,

8

HABITAT. 2: abundante; 7: abundante.
No había sido citada anteriormente para Chile. (Figs. 166 y 167).

St. setigerum Cleve (1864), p. 490, Lám. 4, Fig. 4.

long. cell. s. acul. 40-47.5, lat. s. acul. 40-45.5, lat. isth. 14-16, long. acul. 8-11.
HABITAT. 1: abundante; 2: abundante; 3: escasa; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos
Pellaifa y Pichilafquén (Thomasson, 1963). (Fig. 144).

St. sexcostatum Brébisson var. productum West (1892), p. 21, Fig. 34.
long. cell. 29-32, lat, c. proc. 32-35, lat. isth. 10-12,

HABITAT. 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 152).

St. spongiosum Brébisson in Ralfs (1848), p. 141, Lám. 23, Fig. 4.
long. cell. 38-41, lat. 27-29.5, lat. isth. 17.5-19.

HABITAT. T: escasa. .

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 168).

St. striolatum (Nágeli) Archer (1861), p. 740; West et West (1911), p. 177,
Lám. 127, Figs. 1-5.

long. cell. 23-26, lat. 23-26.5, lat. isth. 6.5-8.5.

HABITAT. '7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Extremo sur del país (Borge,

1901), y en el plancton del lago Todos Los Santos (Thomasson, 1963). (Fig. 141).

St. tetracerum Ralfs (1845); West, West et Carter (1923), p. 118, Lám. 149,
Figs. 2, 3, 4.
long. cell. s. proc. 8-10, c. 21-22, lat. s. proc. 8-9, c. 19-20, lat. isth. 5.6.
HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 3: abundante; 5: rara; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile
(Borge, 1901), en el plancton de los Lagos Villarrica, Pichilafquén y en una
poza al lado del Lago Pellaifa (Thomasson, 1963). También en el Lago Pe-
ñuelas (Navarro y Avaria, 1971). (Fig. 158).

St. trifidum Nordstedt var. inflexum West et West (1896), p. 258, Lám. 16,
Fig. 22.

long. cell. 32-38, lat. s. acul. 26-29, c. 32-36, lat. isth. 10-13.

HABITAT. 2: abundante; 7: escasa.

Esta variedad no había sido citada anteriormente para Chile, Thomasson cita

a la especie típica en el plancton del Lago Pichilafquén (Fig. 147).

449

St. vestitum Ralís (1848), p. 143, Lám. 23, Fig. 1.

long. cell. 18-35, lat. c. proc. 27-39, lat. isth. 5.5-8.
HABITAT. 2: abundante; 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 157).

HYALOTHECA Ehrenberg (1841)

H. dissiliens (Smith), Brébisson in Ralfs (1848), p. 51, Lám. Fig, 1.

long. cell. 13-20, lat. 18-22.

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 3: rara; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos
Todos Los Santos, Llanquihue, Pichilafquén y Villarrica, también en charcos

¿

al lado del Lago Villarrica (Thomasson, 1963). (Fig. 169).

H. dissiliens var. hians Wolle (1887), p. 21, Lám. 54, Figs. 14-16.
long. cell. 17-18, lat. 16-17.

HABITAT. 2: escasa:

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 170).

H. mucosa (Mertens) Ehrenberg (1840) in West, West et Carter (1923), p. 235,
Lám. 162, Figs. 1-4.

long. cell. 16-22, lat. 14-18.

HABITAT. 1: rara; 2: abundante; 3: rara; 7: abundante.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el extremo sur de Chile

(Borge, 1901), y en el plancton de los Lagos Todos Los Santos y Lanalhue

(Thomasson, 1963). (Fig. 171).

BANBUSINA Kiitving (1845)

B. brebissoni Kiútzing (1845), p. 140; Forster (1965), p. 158, Lám. 9, Figs. 28-29,
long. cell. 22,5-25, lat. max. 18-20, lat. pol. 12-24.

HABITAT. 1: rara; 2: abundante; 3: rara; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Como Bambusina montliformis
en el plancton del Lago Pichilafquén (T'homasson, 1963). (Fig. 172).

TEILINGIA Bourrelly (1964)

T. granulatum Roy et Bisset (1886), p. 242, Fig. 9.
long. cell. 8-10,5, lat. 9.5-10, lat. isth. 4-6.

259 =

HABITAT. 2: abundante; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. Para el extremo sur de Chile

(Borge, 1901), y en un charco al lado del Lago Pellaifa (Thomasson, 1963).
(Fig. 175).

SPHAEROZOSMA Corda (1834)

Sph. aubertianum West (1889), p. 206, Lám. 291, Fig. 17; West, West et
Carter (1923), p. 207, Lám. 159, Fig. 13.

long. cell. 14-18, lat. 15-18, lat. isth. 6-7.

HABITAT. 2: escasa; 7: escasa.

DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En el plancton de los Lagos

Pichilafquén, Todos Los Santos, Llanquihue y Laguna Chica de San Pedro

(Thomasson, 1963). (Fig. 174).

Sph. laeve Nordstedt (1870), p. 206, Lám. 3, Fig. 34: West, West et Carter
(1923), p. 218, Lám. 160, Figs. 15-16.

long. cell. 17, lat. s. spin. 19-20, c. 25-34, lat. isth. 4.56, long. spin. 4-6.

HABITAT. 2: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 173).

DESMIDIUM Agardh (1824)

D. baileyi (Ralfs) De Bary (1858); Hirano (1960), p. 397, Lám. 53, Fig. 4.
long. cell. 23-24.5, lat. 22-23.5.

HABITAT. 7: abundante.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 178).

D. baileyi var. baileyi f. tetragonum Nordstedt (1888), p. 94, Lám. 2, Fig. 5.
long. cell. 18-22, lat. 23-25.

HABITAT. 2: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 179).

D. cylindricum Greville (1827) in West, West et Carter (1923), p. 249, Lám. 164,
Figs. 7, 8.

long. cell. 22-30, lat. 47-57, lat. isth. 37-48.

HABITAT. 2: abundante; 7: escasa.

No había sido citada anteriormente para Chile. (Fig. 177).

—y1—

D. swartzii Agarth (1812) in West, West et Carter (1923), p. 246, Lám. 163,
Figs. 5-8.
long. cell. 16-22, lat. 34-38.5, lat. isth. 26-29.

HABITAT. 1: escasa; 2: abundante; 3: rara; 7: abundante.
DISTRIBUCION CONOCIDA PARA CHILE. En charcos al lado de los Lagos
Pellaifa y Villarrica (Phomasson, 1963). (Fig. 176).

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y

Figs.

Fig.

Figs.

Figs.

1.— Cylindrocystis brebissontl.

2.— Cylindrocystis crassa.

3.— Netrium digitus.

4.— Netrium digitus var. rectum.

5.— Netrium interruptum.

6.— Netrium interruptum var. interruptum f. minus.
7 y 8.— Gonatozigon aculeatum.

9.— Gonatozigon brebissontl.

10.— Gonatozigon kinahanil.

11, 12 y 13.— Gonatozigon pilosum.

16, 15 y 16.— Gonatozigon monotaentum.

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17.— Closterium acerosum.

Fig.

18.— Closterium ehrenbergil.

Fig.

¡liferum.

90.— Closterium ehrenbergu var. malinvernianum.
91. — Closterium mon:

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Figs.
Fig.

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Closterium parvulum var. angustum.

Closterium archerianum.
— Closterium calosporum.

Closterium parvulum.
27, 28, 29, 30 y 31.— Closterium dianae.

Fig. 22.—
Fig. 23.—
Fig. 24:
Fig. 25
Figs. 26,

apo

Figs.
Figs.
Figs.
Figs.

Fig.

Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

32 y 33.— Closterium lineatum.

34 y 35.— Closterium delpontel.

36 y 37. — Closterium libellula.

38, 39 y 40.— Closterium kuetzingil.
41.— Closterium pronum.

42 — Closterium littorale.

43.— Closterium gracile.

44. — Closterium aciculare.

45.— Closterium acutum.

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Figs. 46 y 47.— Closterium turgidum; Fig. 48.— Pleurotaentum ovatum;
Fig. 49.— Pleurotaenium trabecula; Fig. 50.— Pleurotaenium trabecula var.

rectum; Fig. 51.— Pleurotaenium ehrenbergii; Fig. 52.— Pleurotaenium ehren-

bergii var, undulatum; Fig. 53.— Pleurotaentum truncatum,

Figs. 54 y 55.— Euastrum abruptum var. subglaziowii; Figs. 56 y 57.— Euastrum
bidentatum; Fig. 58.— Euastrum evolutum; Fig. 59.— Euastrum evolutum var.
glaziowil; Fig. 60.— Euastrum evolutum var. perornatum; Fig. 61.— Euastrum
dubium; Fig. 62.— Euastrum denticulatum; Fig. 63.— Euastrum acanthophorum,

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

64.— Euastrum didelta. Fig. 68.— Euastrum ansalum.
65.— Euastrum elegans. Fig. 69.— Euastrum johnson.
66.— Euastrum binale var. parallelum.
67.— Euastrum humberti.

75 :

76

Figs. 70 y 71.— Euastrum oblongum.

Fig. 72.— Euastrum gemmatum.

Fig. 73.— Euastrum spinulosum.

Figs. 74, 75 y 76.— Euastrum validum var. glabrum,

77.— Micrasterias denticulata.

78.— Micrasterias radiosa var. ornata f. elegantior.
79.— Micrasterias truncata.

80.— Actinotaenium cucurbitum.

81.— Actinotaenium minultissimum.

84
85

5% 84,85,86
104 82,83, 89,90, 91,92

90 9 —DA 87, 88

Fig. 82.— Cosmarium minimum. Fig. 83.— Cosmarium contractum. Fig. 84.—
Cosmarium bioculatum. Fig. 85.— Cosmarium bioculatum var. depressum.
Fig. 86.— Cosmarium melanosporum. Fig. 87.— Cosmarium circulare. Fig. 88.—
Cosmarium ctrculare var. minus. Fig. 89.— Cosmarium depressum. Fig. 90.—
Cosmarium depressum var. circulare. Fig. 91.— Cosmarium subtumidum var.
borgei. Fig. 92.— Cosmartum venustum var, minus.

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

93.— Cosmarium

94 — Cosmarium

95.— Cosmarium

96.— Cosmaritum

97.— Cosmarium

98.— Cosmarium

99.— Cosmarium

100.— Cosmarium

101.— Cosmarium

102.— Cosmarium

103.— Cosmarium

104.— Cosmarium

laeve.

laeve var. octangulare.
blytti.

difficile.

trilobulatum var. bioculatum.
bireme.

bireme var. huzelti.

lobatum var. minus.
monomazum var. polymazum.
isthmochondrum.,
dichondrum.

ornatum.

cate ici

10%. 100

102,104

93,94,96,97 , 101
98
103

10

-—71

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

105.— Cosmarium ochthodes var. amoebum.
106.— Cosmarium obtusatum.

107.— Cosmarium orthostichum var. pumilum.
108.— Cosmarium portianum.

109.— Cosmarium quadrum.

110.— Cosmarium punctulatum.

111.— Cosmarium bipunctatum.

112.— Cosmarium ovale.

A

105, 106,107, 108, 110

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Fig. 113.— Cosmarium speciosissimum.

Fig. 114.— Cosmartum subprotumidum.

Fig. 115.— Cosmarium subspeciosum var. validius.
Fig. 116.— Cosmarium binum.

Fig. 117.— Cosmarium formosulum.

“000000000000000902

119,121

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Da, 122

122

pseudopyrami-

Cosme:

119.— Cosmarium

osmarium pseudoconnatum.

122.— Xanthidium antilo paeum.

Fig.

Fig. 118.— Cosmartum pseudotinecense.

datum.

rium con-

a

121.—

Fig.

1
4

120.— C

Fig.

Fig.

natum.

124

131

132
04 123, 124,125, 126
127 , 128,129,130
131,132.

Fig. 123.— Staurodesmus convergens.
Fig. 124.— Staurodesmus extensus.

Fig. 125.— Staurodesmus cuspidatus.
Figs. 126 y 127.— Staurodesmus dickiel.
Fig. 128.— Staurodesmus mamillatus.
Fig. 129.— Staurodesmus triangularis.
Fig. 130.— Staurodesmus subulatus.

Fig. 131.— Staurodesmus dejectus.

Fig. 132.— Staurodesmus patens.

133.— Staurastrum
134.— Staurastrum
135.— Staurastrum
136.— Staurastrum
137.— Staurastrum
138.— Staurastrum
139.— Staurastrum
140.— Staurastrum
141,— Staurastrum

136,137 , 138
139,140, 141

muticum.

orbiculare.

orbiculare var. depressum.
bieneanum.

brevispinum.

disputatum var. extensum.
alternans.

punctulatum.

striolatum,

142.— Staurastrum

143.— Staurastrum

144.— Staurastrum

145.— Staurastrum

146.— Staurastrum

147.— Staurastrum

148.— Staurastrum

149 .— Staurastrum

dilatatum.

eladiosum.

setigerum.

quadrangulare.

quadrangulare var. contectum.
trifidum var. inflexum.
pinnatum var. reductum.

asterioideum. var. nanum.

ale

10 y

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DL, 143,145

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04 146,147, 48,149

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

150.— Staurastrum

151.— Staurastrum

152.— Staurastrum

153.— Staurastrum

154.— Stuurastrum

155.— Staurastrum

156.— Staurastrum

157.— Staurastrum

158.— Staurastrum

159.— Staurastrum

160.— Staurastrum

161.— Staurastrum

polymorphum.
polymorphum var. cinctum.
sexcostatum var. productum.
avicula var. subarcuatum.
avicula,

furcigerum.

asterias.

vestitum.

tetracerum.

gracile.

chaetopus.

longipes.

80 —

160 22-150, 151,152,153
154, 155,156 ,157
158, 159,160

Du, 161

-—Bhe-

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

Fig.

162.— Staurastrum

163.— Staurastrum

164.— Staurastrum

165.— Staurastrum

166.— Staurastrum

167.— Staurastrum

168.— Staurastrum

manfeldtii var. annulatum.
leptocladum.

laeve.

leptacanthum.

rotula (9 radiado).

rotula (8 radiado).

spongiosum.

. 169.— Hyalotheca dissiliens.

. 170.— Hyalotheca dissiliens var. htans.
. 171.— Hyalotheca mucosa.

. 172.— Bambusina brebissonit.

. 173.— Sphaerozosma laeve.

.- 174.— Sphaerozosma aubertianum.

. 175— Teilingia granulatum.

284

E
Yi: E
OR y
e .. Y La = Uy
E E BE yt
NS ES

169: ===

o
00000000

00000900

o
Yo

Fig.
Fig.
Fig.
Fig.

176.— Desmidium
177.— Desmidium
178.— Desmidium
179.— Desmidium

10 p

—_——

swartzi.

cylindricum.

bailey:.

baileyi var. batleyi f. tetragonum.

ana -

176 ,177,178,, 179

INDICE DE TAXA

Actinotaentum
A. cucurbitum, 35
A. minutissimum, 35

Bambusina
B. brebissonit, 50

Closterium
C. acerosum, 28
aciculare, 28
acutum, 28
archerianum, 28
calosporum, 28
. delpontet, 28
dianae, 29
. €ehrenbergil, 29
ehrenbergit var. malinvernianum, 29
. gracile, 29
. kuetzingit, 29
libellula, 30
lineatum, 30
littorale, 30
montliferum, 30
parvulum, 30
parvulum var. angustum, 30
pronum, 31
turgidum, 31

PODA NON RS A ES

Cosmarium

bioculatum, 36

bioculatum var. depressum, 36
binum, 36

bipunctatum, 36

bireme, 36

bireme var. huzelu, 36

blytti, 37

circulare, 37

DADAPANA

peer” PO

Cylindrocystis
C. brebissonit, 26
C. crassa, 26
Desmidium
D. bailey1, 51
D. baileyi var. baileyi f. tetragonum,
D. cylindricum, 51
D. swartzit, 52
Euastrum
E. abruptum var. subglaziowi, 32
E. acanthophorum, 32
E. ansatum, 32
E. bidentatum, 32
E. binale var. parallelum, 33

AADDADADAPAADADAADAAADAAAAPDOANADO

. circulare var. minus, 37
. connatum, 37
. contractum, 37

depressum, 37

depressum var. circulare, 38

. dichondrum, 38

. difficile, 38

. formosulum, 38

. isthmochomdrum, 38
. laeve, 38

laeve var. octangulare, 39
lobatum var. minus, 39

. melanosporum, 39

. minimum, 39

. monomazum var. polimazum, 39
. obtusatum, 39

ochthodes var. amoebum, 39
ornatum, 40
orthostichum var. pumilum, 40

. ovale, 40

portianum, 40
pseudoconnatum ,40
pseudopyramidatum, 40
pseudotinecense, 40
punctulatum, 41

. quadrum, 41

speciosissimum, 41

. subspeciosum, 41

subspeciosum var. validius, 41
subprotumidum, 42
subtumidum var. borges, 42

. trilobulatum var. bioculatum, 42
. venustum var. minus, 42

GQ

denticulatum, 33

didelta, 33

dubium, 33

elegans, 33

evolutum, 33

evolutum var. glaziowit, 33
evolutum var. perornatum, 34
gemmatum, 34

humbertii, 34

johnsonti, 34

oblongum, 34

spinulosum, 34

validum var. glabrum, 34

y o y y y Es

2

eMe!

Po Po tas Po

Gonatozigon
G. aculeatum, 27
G. brebissonit, 27
G. kinahani, 27
G. monotaenium, 27
G. pilosum, 27

Hyalotheca
H. dissiliens, 50
H. dissiliens var. hians, 50
H. mucosa, 50

Micrasterias
M. radiosa var. ornata f. elegantior, 35
M. denticulata, 35
M. truncata, 35

Netrium
N. digitus, 26
N. digitus var. rectum, 26
N. interruptum, 26
N. interruptum var. interruptum f. minus, 27

Pleurotaenium
Pl. ehrenbergu, 31
Pl. ehrenbergii var. undulatum, 31
Pl. ovatum, 31
Pl. trabecula, 31
Pl. trabecula var. rectum, 32
Pl. truncatum, 32

Staurastrum
St. alternans, 44
St. asterias, 44
St. asterioideum var. nanum, 45
St. avicula, 45
St. avicula var. subarcuatum, 45

a A

St. bineanum, 45

St. brevispinum, 45

St. chaetopus, 45

St. dilatatum, 46

St. disputatum var. extensum, 46
St. furcigerum, 46

St. gladiosum, 46

St. gracile, 46

St. laeve, 46

St. leptacanthum, 46

St. leptocladum, 47

St. longipes, 47

St. manfeldtii var. annulatum, 47
St. muticum, 47

St. orbiculare, 47

St. orbiculare var. depressum, 47
St. pinnatum var. reductum, 48
St. polymorphum, 48

St. polymorphum var. cinctum, 48
St. punctulatum, 48

SV quadrangulare var. contectum, 48
St. rotula, 48

St. setigerum, 49

St. sexcostatum var. productum, 49
St. spongiosum, 49

St. striolatum, 49

St. tetracerum, 49

St. trifidum var. inflexum, 49

St. vestitum, 50

Staurodesmus

Std. convergens, 43
Std. cuspidatus, 43
Std. dejectus, 43
Std. dickiet, 43
Std. extensus, 43
Std. mamillatus, 44
Std. patens, 44

Std. subulatus, 44
Std. triangularis, 44

Sphaerozosma
Sph. Aubertianum, 51
Sph. laeve, 51

Teilingia
T. granulatum, 50

Xantidium
X. antilopaeum, 42

— 90 —

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE),
EL 22 DE OCTUBRE DE 1975

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una
Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que
los números se publican tan pronto como la Comisión
Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

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MESTICUITO. DE BIOLOGIA

BOTANICA dd y o N? 31

CIANOFITAS MARINAS DE CHILE I. CIANOFITAS DEL
AMBIENTE INTERMAREAL DE LA BAHIA
DE CONCEPCION

por

MARIELA GONZALEZ y OSCAR O. PARRA

LIBRARY

SEP 15 1976

NEW YORK
BOTANICAL GARDEN

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
CG HTLE

DIRECTOR :

Dr. Oscar Matthei J.

COMITE EDITOR :

Dr. Oscar Matthei ]. Dr. Lisandro Chuecas M.
Prof. Lajos Biro B. Dr. Mario Silva O.

Prof. Ivonne Hermosilla B.

EDITOR EJECUTIVO: Dr. Jorge N. Artigas

GAYANA

INS U TO DEBER BIOLOGIA

BOTANICA 1913 N2 31

CIANOFITAS MARINAS DE CHILE 1. CIANOFITAS DEL
AMBIENTE INTERMAREAL DE LA BAHIA
DE CONCEPCION

por

MARIELA GONZALEZ y OSCAR O. PARRA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente
conocerse sino luego que los sabios del país hagan un
especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

CIANOFITAS MARINAS DE CHILE 1, CIANOFITAS DEL
AMBIENTE INTERMAREAL DE LA BAHIA
DE CONCEPCION

por

MARIELA GONZALEZ y OSCAR O. PARRA (*)

RESUMEN

- Se hace un estudio taxonómico y ecológico de las Cianófitas del ambiente

intermareal de la Bahía de Concepción, Chile (36%42" Lat. S.; 7302” Long. W).

El estudio taxonómico comprende claves, diagnosis, distribución tanto en
Chile como a nivel mundial y dibujos originales.

Los resultados revelan la presencia de especies bentónicas y planctónicas.
Entre las especies bentónicas existen formas de vida saxícola, epifítica, per-
forante y limícola.

En total, se encontró 40 especies correspondientes a 21 géneros, de los
cuales 7 géneros y 23 especies se señalan por primera vez para Chile.
Chroococcus minor (Kuetz.) Naeg., Chroococcopsis gigantea Geitler, Oscilla-
toria geitleri Frémy y Oscillatoria prolifica (Grev.) Gomont, se citan por pri-
mera vez para ambientes marinos.

ABSTRACT

A study on the taxonomy and ecology of blue-green algae living in the
intertidal zone of Bay of Concepción (36%42' Lat. S; 7302” Long. W) has
been carried out.

The taxonomic study includes keys, diagnosis, chilean and world wide
distributions; original drawings are presented.

The results reveal the occurrence of benthic and planktonic species. The
benthic species present different modes of life, i.e., saxicolous form, epiphytic
form, shellperforating form and limicolous form.

As a whole. 40 species of blue-green algae corresponding to 21 genera
were found; 7 genera and 23 species are new for Chile. Chroococcus minor
(Kuetz.) Naeg., Chroococcopsis gigantea Geitler, Oscillatoria geitleri Frémy
and Oscillatoria prolífica (Grev.) Gomont, are new records for marine
environment.

(*) Depto. Botánica, Instituto Biología, Universidad de Concepción, Chile.

Lo

INTRODUCCION

Al hacer una revisión de los estudios efectuados sobre Cianófitas marinas
en el mundo, se encuentra que éstos son muy escasos. Entre los principales
están Farlow (1881) quien hizo un estudio general sobre las algas marinas
de la región de Nueva Inglaterra (EE.UU.); Setchell y Gardner (1919) similar
al anterior, pero en la costa del Pacífico de Norteamérica; Frémy (1928, 1933,
1936 y 1938) con varios trabajos ficológicos sobre la costa de Europa y otros
en que estudia exclusivamente el grupo de las Cianófitas; Newton (1931) quien
investiga las algas en la costa de las Islas Británicas; Feldmann (1937, 1953 y
1958) quien al igual que Frémy estudia en forma particular el grupo de las
Cianófitas marinas de Francia; Womersley (1946) con un trabajo sobre algas
marinas en la costa del Sur Este de Australia. En años más recientes, se en-
cuentran Chapman (1956 y 1971) que hacen un estudio sobre las algas marinas
de Nueva Zelandia y Fiji; Stewart (1960) sobre Cianófitas marinas de las Islas
de Barra; Umezaki (1961) quien además de hacer un trabajo netamente taxo-
nómico, agrega algunos datos sobre distribución geográfica, ecología y perio-
dicidad estacional de las Cianófitas marinas del Japón; Halperin, quien en
los años 1963, 1967, 1969 y 1970, publicó trabajos sobre Cianófitas de la costa
Argentina; Ardré (1969-1970) estudia las algas marinas de Portugal; Fernández
Honores (1969) con un trabajo sobre algunas especies de Cianófitas de la
zona costera de Perú; Acleto (1970) con estudios sobre las Cianófitas de la
costa Atlántica de Colombia y, finalmente, Sournia (1970) sobre las Cianófitas
que se encuentran en el plancton marino.

En Chile, las Cianófitas marinas no han sido estudiadas. Las escasas es-
pecies chilenas conocidas hasta la realización del presente estudio (Anexo I)
fueron encontradas por expediciones francesas (Hariot, 1889 y 1892) y suecas
(Levring, 1960) efectuadas al Cono Sur de Chile y en menor grado al Norte,
y por los ficólogos chilenos Santelices (1966) y Alveal (1970) para la zona de
mareas del Norte de Chile y Valparaiso, respectivamente.

Consecuentemente con lo anterior, se na considerado de gran importancia
comenzar el estudio de este grupo como una contribución al conocimiento
taxonómico y ecológico del ambiente intermareal donde las Cianófitas habitan
preferentemente.

AREA DE ESTUDIO

La Bahía de Concepción se encuentra en Chile a 36%42' Lat. S; 7302”
Long. W.

Siete localidades fueron consideradas para el presente estudio, cuatro de
las cuales representan ambientes marinos típicos y, tres, contaminados; dos
marinos y el otro mixohalino. Los lugares investigados fueron elegidos en
tal forma que su ubicación correspondió a una distribución regular a lo largo
de la costa de la Bahía y considerando el fácil acceso a ellas para la obtención
de muestras durante todo el año. Estas son: Cocholgue, Bellavista, Punta de
Parra, Cerro Verde, Canal El Morro, Talcahuano y Caleta Leandro (Fig. 1).

En la costa Este de la Bahía la localidad más al Norte corresponde a
Cocholgue, playa amplia, cuyo sustrato rocoso se presenta en una extensa
plataforma de arenisca del Senoniano, donde se implantan una gran cantidad
de algas y existen mumerosas pozas de marea. Más al Sur, y al mismo costado
de la Bahía, se encuentra Bellavista, una playa estrecha, formada por pequeños
roqueríos correspondientes a pizarras, de nódulos gruesos con estratificación
y foliación casi vertical, de posible origen Paleozoico. Las rocas están más
desprovistas de algas mayores que en la localidad anterior.

Siguiendo siempre por la costa Oriental, está Punta de Parra. Es una
playa semejante a Bellavista, pero con roqueríos formados por grandes y
pequeños bloques que emergen del agua, originando abundantes pozas de
marea. La naturaleza de las rocas corresponde a filitas de posible origen
Paleozoico.

Al Sureste de la Bahía, se realizó muestreos en el sector Sur de la playa
Cerro Verde, donde la bajamar deja al descubierto una zona rocosa constituida
principalmente por granitos Paleozoicos (comunicación personal del Prof. L.
Biró, Dpto. Geología, Instituto de Biología, U. de C.) y areniscas Terciarias.
Sobre las rocas se desarrolla en forma abundante y predominante Ulva sp..
La playa es amplia y en su mayor extensión arenosa. Sus aguas presentan una
contaminación orgánica y/o inorgánica de la Caleta de Pescadores y de in-
dustrias como Fanaloza y Cosaf.

También se recolectó material en el Canal El Morro. Este está ubicado
al Sur de Talcahuano y recibe aguas residuales de industrias de harina de
pescado y residuos domésticos. El sustrato es un limo maloliente de color
café negruzco.

Otro lugar elegido, fue la playa ubicada frente al Gimnasio Municipal
de Talcahuano, donde afloran areniscas Terciarias. Se encuentra muy poca
cantidad de algas superiores. En dicho lugar desembocan aguas servidas que
afectan la salinidad y aportan probables agentes contaminantes al área.

Pl

Por último, Caleta Leandro, al Noroeste de la Bahía, en la Península de
Tumbes, presenta una playa arenosa no muy extensa, limitada en sus extremos
Norte y Sur por roqueríos de esquistos micáceos y filitas de posible origen
Precámbrico. En el lado Norte, los roqueríos son mayores y con la bajamar
se forman numerosas pozas de marea, en las cuales se desarrolla gran cantidad
de algas, tanto macroscópicas como microscópicas. En general la flora marina
es abundante. En el extremo Sur, las rocas quedan al descubierto sólo en
bajamar.

MATERIALES Y METODOS

El material estudiado fue recolectado durante los meses de abril de 1971
a agosto de 1972. Se hicieron seis colectas en cada estación de muestreo con
excepción de Talcahuano y Canal El Morro donde se hicieron cinco, repartidas
en forma más o menos uniforme, abarcando todas las estaciones del año.

A continuación se da la lista de estaciones, número de muestras y la fecha
de recolección correspondientes a Cada una de ellas.

EstacióÓN 1: COCHOLGUE (36%36' S; 7259 W).
Muestras N0 1 a la NO 17; 18-IV-1971
de NO 18 a la NO 30; 15-VIIL-1971
Hi NO 3la la NO 35; 15-X-1971
4 NO 36 a la N0 42; 5-11-1972
dá N0 43 a la NO 49; 27-IV-1972
á NO 50 a la N0 56; 22-VI-1972
Muestra NO 279 ; 19-IV-1974

EsTacióN 2: BELLAVISTA (36938'S; 1257"W).
Muestras N0 57 a la NO 60; 3-V-1971
de NO 61 a la NO 65; 13-VIII-1971

“Y NO 66 a la N0 69; 15-X-1971
> N0 70 a la NO 74; 5-11-1972
" N0 75 a la NO 79; 27-IV-1972
z N0 80 a la NO 82; 22-V1-1972
Muestra NQ 277 ; 27-1V-1972

Estación 3: PUNTA DE PARRA (36%40'S; 72259'W).
Muestras NO 83 a la NO 89; 3-V-1971

p N0 90 a la NO 97; 13-VIIM-1971
ds NO 98 a la NO 104; 29-X-1971

de. 0

NO J05 a la NO 110; 25-1-1972

NO 111 a la NO 116; 11-V-1972

N0 117 a la NO 123; 9-VIII-1972
Muestra NQ 278 ; 11-V-1972

EsTACciÓN 4: CERRO VERDE (36%43'S; 72259'W).
Mestres NQ 124 a la NQ 137; 30-VI-1971
NQ 138 a la NO 147; 16-1X-1971
NQ0 148 a la NO 152; 29-X-1971
N0Q 153 a la NO 158; 23-XI1-1971
NQ 159 a la NQ 163; 11-V-1972
NQ0 164 a la NO 167; 9-VI1-1972

EsTacióN 5: CANAL EL MORRO (36%44'S; 7306"W)
Muestras N0 168 a la NO 169; 9-VIT-1971
NO 170 a la NO 174; 3-VIIIT-1971
NO 175 ; 30-1X-1971
NO 176 a la NQ 179; 4-IV-1972
NO 180 a la NQ 184; 21-V1-1972

ESTACIÓN 6: TALCAHUANO (36%43'S; 73%06'W).
Muestras NO 185 a la NO 192; 11-VI-1971
e] N0 193 a la N9 199; 31-VI11-1971
NQ 200 a la NO 203; 30-X1-1971
NQ 204 a la NO 208; 4-1V-1972
NQ 209 a la NO 212; 21-V1-1972

EsTacióN 7: CALETA LEANDRO (3639 S; 7306" W).
dica N9Q 213 a la NO 234; 8-VI-1971
N0Q 235 a la NO 245; 30-IX-1971
NQ 246 a la NO 253; 3-XI1-1971
N0 254 a la NO 263; 14-111-1972
NO 264 a la NO 269; 15-IV-1972
NO 270 a la NO 274; 15-VII-1972

Muestra NQ 275 ; 8-VI-1971
NO 276 ; 15-IV-1972

Durante el período de muestreo se trabajó en un rango de marea que fue
de una extrema pleamar de sicigia correspondiente a 1.92 m a una bajamar
de sicigia de 0.21 m.

07

La recolección sobre rocas se hizo utilizando bisturí, cuchillo y pinzas.
Las algas planctónicas de pozas de marea se recolectaron con una red manual
de plancton de malla de 35 ¡. El sustrato con algas perforantes y epifíticas se
llevó al laboratorio para obtener posteriormente los ejemplares a estudiar.

Conjuntamente con la recolección de material se efectuó mediciones de
temperatura y salinidad; la temperatura se midió en el momento de la colecta
ya sea bajo agua en algunos casos o en la superficie del sustrato en otros.
Se utilizó para su efecto un termómetro de —5%C a 45%C. Para la medición
de salinidad, se sacó agua en un recipiente plástico de 1 litro y se llevó al
laboratorio donde se usó un salinómetro Autolab modelo 601 MK III, con una
precisión de + 0.005 %o para su lectura.

Una vez en el laboratorio se procuró observar el material “in vivo”, para
luego fijarlo en formalina neutra 29%, (Drouet, 1968).

Para casos en que el material fue abundante y más o menos puro, se
conservó seco, en papel, sin tratamiento previo. Para el estudio de algas
epifíticas sobre algas macroscópicas, la muestra se obtuvo raspando con una
hoja de afeitar la superficie de la lámina del alga huésped. Cuando ésta era
microscópica se analizó directamente al microscopio. Para Cianófitas perfo-
rantes de conchillas de moluscos se utilizó HCl 59%, (Torgo, 1963) para disolver
el carbonato de calcio.

n

Además, se hicieron cultivos “in vitro” de enriquecimiento para obtener
material vivo suficiente que permitiese un completo estudio de identificación.
Las algas fueron cultivadas en cápsulas Petri que contenían la solución nu-
tritiva (Solución Erdschreiber; Starr, 1964) hasta la mitad de su capacidad.
La inoculación se hizo directamente con pinzas o micropipetas. Los medios
inoculados fueron puestos en dos cámaras de cultivos a temperatura de labo-
ratorio. La iluminación, con una periodicidad de 12 horas, fue dada mediante
tubos fluorescentes de 40 Watios, separados entre sí por una distancia de
7.5 cm a 36 cm de los cultivos en una cámara y a 18 cm en la otra. La
fluctuación máxima de temperatura a lo largo del año en el laboratorio fue
de 16% (12%C en julio de 1973, a 28%C en enero de 1972).

El examen de las muestras se efectuó mediante un microscopio binocular
Zeiss Standard WL, con contraste de fases, usando oculares Kpl 10 y 25 y ob-
jetivos 25, 40 (ap. n. 1.00) y 100 Ph (ap. n. 1.30) de inmersión en aceite.

Los dibujos se hicieron con ayuda de una Gran Cámara de dibujo Zeiss.

Las especies se identificaron siguiendo el sistema de empleo de claves y
descripciones usando principalmente el trabajo de Geitler (1932).

PARTE TAXONOMICA

División CYANOPHYTA
Schussnig. Verh. Zool.-Bot. Ges. Wien 74-75:259, 1924-1925.

Clase CYANOPHYCEAE
Sachs, Lehrb. Bot., 4:248, 1874.

Orden CHROOCOCCALES
Wettstein, Handb. Syst. Bot. 3rd. ed. :79, 1924.

Familia CHROOCOCCACEAE

Naegeli, Gatt. einzell, Alg., 44, 1849; emend. Geitler, Synopt. Darst. Cyan.,
Beih. Bot. Centralbl., 1925,

Género. G.EBR O0:CHOWGAGUS
Naegeli, Gatt. einzell. Alg., 45, 1849,

Céluias esféricas de color azul verdoso, raramente violeta, amarillo o ana-
ranjado, formando agrupaciones de 2, 4, 8 células, raramente en mayor nú-
mero. Cada célula con una vaina gelatinosa homogénea o estratificada, incolora
o raramente coloreada. División celular en tres direcciones.

CLAVE PARA LAS ESPECIES

1.— Células de 3 a 5 yu de diámetro embebidas en una masa gelatinosa;
vaina incolora, homogénea, escasamente visible occ... Chr. minor

1.— Células de 8 a 12 y, de diámetro no embebidas en una masa gelatinosa,
solitarias; vaima incolora, notoria, a veces estratificada

mnrrrosssrrsr..ons...

Chroococcus minor (Kuetz.) Naeg., Gatt. einzell. Alg., 47, Lám. la, Fig. 4, 1849.

Células vegetativas de 2.6 a 5.4 ¡ de diámetro, solitarias o en grupos de
2-3; redondeadas cuando solitarias, ovaladas o angulosas cuando se encuentran
en mayor número. El color de las células varía de un café amarillento a café
verdoso; contenido celular homogéneo. Vaina amplia, incolora de 15 a 2 p
de espesor (Fig. 2).

19 <=

HABITAT. Sobre plataforma rocosa, entre filamentos de Calothrix crustacea
y en pozas de marca entre filamentos de otras algas.
MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 1, 2, 4, 5, 9, 15, 24, 27
(todas sobre roca, entre filamentos de C. crustacea).

Bellavista: muestra NQ 77 (en pozas de marea).
DISTRIBUCION EN CHILE.— No había sido citada para Chile.
DISTKIBULCIÓON GEOGRAFICA. Citada sólo para aguas continentales en
Estados Unidos, Hungría, Alemania, Austria, Yugoeslavia, Italia, Suecia, ls-
landia, Rusia y Tahiti.

Chroococcus turgidus (Kuetz.) Naeg., Gatt. eimzell, Alg., 46, 1849.

Células vegetativas de 8 a 13 y de diámetro, solitarias o en grupos de 2 a
4, muy raramente en mayor mumero, esféricas o hemisféricas, de color verde
azulado; contenido celular finamente granular. Vaina incolora de 25 a 5 p
de espesor, homogénea o ligeramente estratificada (tig. 3).

HABITAT. Sobre platalorma rocosa entre filamentos de Calothrix crustacea
y entre filamentos de otras algas.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 8, 15, 24, 36, 40, 42
(todas sobre roca, entre filamentos de C. crustacea). Cerro Verde: muestras
Nos. 124 y1127.

DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas continentales y marinas;
Lago Llanquihue (Thomasson 1963, p. 63); Lago “Todos los Santos (Tho-
masson 1963, p. 6b); Santiago (Licuime 1963, p. 50, Lám. A-1); Golfo de
Ancud (Levring 1960, p. 26).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; tanto de ambiente dulce
acuícola como marino.

Género MICROCYSTIS
Kuetzing, Linnaea 8:372, 1833.

Colonias generalmente librenadantes de formas variadas, esféricas O ci-
líndricas; sólidas, lobuladas o perforadas, simples o a veces asociadas en ra-
cimos conteniendo gran número de células. Células esféricas, ovaladas o elíp-
ticas envueltas por una vaima gelatinosa generalmente incolora; contenido
celular azul verdoso. Pseudovacuolas a veces presentes. División de la célula
en tres direcciones.

O,

Microcystis litoralis (Hansg.) Forti in De Toni, Syll. Algarum, 5:89, 1907.

Colonia de forma globosa o irregular con numerosas células envueltas por
una vaina común, Cásmulas de 3 a 5.5 y de diámetro, en ocasiones, 6 y de
longitud, esféricas, ovaladas o elipsoidales; contenido celular de color café
verdoso o verde amarillento, finamente granular (Fig. 6).

HABITAT. Sobre roca y en plancton de pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 2, 9, 10, 24, 37 (sobre
roca). Punta de Parra: muestra N% 87. Cerro Verde: muestras Nos. 154, 157,
164. Caleta Leandro: muestra NQ 234,

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTKIBUCION GEOGKAt1CA. En ambiente marino; en el Atlántico desde
Escandinavia a Portugal.

Género MERISMOPEDIA

Meyen, in Wiegmann, arch. Naturgesch., 2:67, 1839,

Colonias librenadantes regulares, pianas, monostromáticas, lormadas por
células globosas, elipsoidales o cilinariCas, dispuestas en una vama homogénca.
Numero de celulas de la coionia de 4, 3, lo, 32, o más, División celular en
dos direcciones, Las lormas marinas son muy raras.

Merismopedia glauca (Ehrenb.) Naeg., Gatt. einzell, Alg., 55, Lám. 1d, Fig. 1,
1849,

Colonias panas, cuadradas o rectangulares de 16 a 64 células, 45 a 150 mM
de ancno, con bordes ligeramente sinuosos; células muy juntas generalmente
en arvisión de 5 a 6 y de diametro, ovales O globosas, de color verde pasto
claro. Vaina hialma, homogenea (Figs. 4 y 5).

HABITAT. YPlanctónica en pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Punta de Parra; muestras Nos. 104, 113. Caleta
Leandro: muestra NO 266.

DISTRIBUCION EN CHILE, Citada solamente para aguas contimentales;
Magallanes (Borge 1901, p. 31); Lago Fagnano, Lago Roca, Lago Riñihue
(Thomasson 1955, pp. 195, 198 y 202); Lago Villarrica, Lago Llanquihue,
Lago Todos los Santos, Lago Lanaihue, Lago Pellaifa (Ihomasson 1963, pp. 45,
63, 66, 72 y 102); Santiago (Licuime 1963, p. 50, Lám. A-5); Lago Peñuelas
(Navarro y Avaria 1971).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; tanto de ambiente dulce
acuícola como marino.

—]1=

Familia ENTOPHYSALIDACEAE
Geitler in Rabenhorst's Kryptogamen-Fl.: 292, 1932,

Genero" EN TOP EYSATTS

Kuetzing, Phycol. gener.: 177, 1843.

Plantas al comienzo microscópicas luego macroscópicas, creciendo sobre
o dentro del sustrato. Células globosas, elipsoidales, cilíndricas o poliédricas
dispuestas en filas derechas irregulares, envueltas por una vaina que puede
ser de color amarillo, café, rojo o violeta. El conjunto forma un talo crustáceo,
irregular. Se han observado aquinetas.

La especie tipo, E. granulosa es abundante sobre rocas marinas donde
forma una zona negra en el límite de las mareas.

Entophysalis granulosa Kuetz., Phycol. gener., 177, Lám. 18, Fig. 5, 1843,

Talo incrustante de aspecto granuloso o verrucoso de alrededor de 1 mm
de espesor, de color café oscuro a negrusco; vaina incolora a café amarillenta,
algo estratificada. Células de 2 a 5 p de diámetro, esféricas, ovoides, piriformes
o angulares, de color café verdoso, compactas, formando agrupaciones con-
céntricas a manera de costras en la parte central e hileras en los bordes
(Figs. 7-11).

HABITAT. Sobre roca; en algunos casos crece junto a Calothrix crustacea.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: -muestras Nos. 9, 15, 23, 24, 40 (en
todas, junto a C. crustacea). Punta de Parra: muestras Nos. 87, 102. Caleta
Leandro: muestras Nos. 218, 219, 223, 224, 267.

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en ambiente marino.

A YES

Orden CHAMAESIPHONALES
Wettstein, Hand. Syst. Bot. 3rd. ed., 1924,

Familia PLEUROCAPSACEAE

Geitler in Rabenhorst's Kryptogamen-Fl.: 315, 1932,

(CENEroO O ER OO CIO CE CEIO RSS
Geitler, Arch, Protistenk., 51:342, Fig, k, 1925.

Talo compuesto por células agrupadas densamente; no formando fila-
mentos. Células a menudo solitarias. Pared celular generalmente gruesa, estra-
tificada. Endosporas numerosas, derivadas de esporangios de gran tamaño.

Chroococcopsis gigantea Geitler, Arch. Protistenk., 51:342, fig. k, 1925.

Células solitarias o generalmente en grupos irregulares redondeadas, elip-
soidales o irregulares, de 6 a 23 y de diámetro; contenido celular de color
azul verdoso o violeta; pared celular gruesa, incolora, claramente estratificada,
a menudo formada de dos estratos. Endosporas numerosas, de 1.5 y de diá-
metro (Fig. 12).

HABITAT. Sobre rocas, entre filamentos de otras algas (Clorófitas).
MATERIAL ESTUDIADO. Talcahuano: muestra NO 192.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Citada para aguas continentales; Austria.

Género NEMATORADAISIA
Geitler, Synopt. Darst. Cyan., Beih. Bot. Centralbl. 41(2):242, 1925.

Talo formando una costra más o menos circular de filamentos derechos
y erectos, que se disponen radialmente. Filamentos cortos, paralelos, no rami-
ficados, no adosados unos a otros, provistos de una vaina sólida. Esporangios
terminales. Endosporas numerosas.

Nematoradaisia laminariae (S. et G.) Geitler, Synopt. Darst. Cyan. Beih. Bot.
Centralbl. 41(2):242, 1925.

Planta epifítica, formando un talo de hasta 300 po de diámetro. Filamentos
erectos, paralelos, no ramificados, de 30 a 40 u de largo. Células algo cuadradas,
de 3 a 4.5 y de diámetro; contenido protoplasmático de color verde azulado.
Esporangios redondeados, de 8 a 10 ¡ de diámetro; endosporas numerosas de
0.8 y de diámetro, las que se forman simultáneamente por división del espo-
rangio (Figs. 16-18).

dh

HABITAT. Epifítica sobre algas superiores.

MATERIAL ESTUDIADO. Bellavista: muestras Nos. 65, 70, 81. Punta de
Parra: muestra NO 106.

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GSEOGRAFICA. Costa de California; en ambiente marino.

Género PLEUROCAPSA

Thuret in Hauck, Meeresalgen Deutschl. Osterr. Rabenhorst's Kryptogamen-Fl.,
2:515, 1885.

Colonias generalmente crustáceas, formadas por filamentos escasamente
notorios, cortos, paralelos, radiales, a menudo dicotómicamente divididos, o
más raramente formadas por pequeños grupos celulares globosos. Células esfé-
ricas o angulares, rara vez ovales o poliédricas; contenido celular azul verdoso,
oliva, amarillento o violeta. Esporangios con una vaina gruesa formando nu-
merosas endosporas esféricas. División celular en tres planos. Multiplicación
por división del filamento en fragmentos y por endosporas.

Pleurocapsa fuliginosa Hauck in Rabenhorst's Kryptogamen-Fl., 2:515, Fig. 231,

1885.

Talo formando una costra delgada de color negruzco sobre el sustrato rocoso;
células de 3 a 7 y de diámetro, solitarias o unidas de a 2, 4 u 8, de forma
redondeada o angular; contenido celular homogéneo cuyo color varía de un
café amarillento a un amarillo oro. Vaina incolora y homogénea. Esporangios

de 10 a 15 p de diámetro; endosporas numerosas de 1.5 a 2 m de diámetro
(Figs. 13-15).

HABITAT. Sobre roca y en pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Bellavista: muestras Nos. 59, 60, 61, 65, 75, 76,
78. 79, 66, 68, 80. 81 (las cuatro últimas, en pozas de marea). Punta de Parra:
muestra NQ 105 (en pozas de marea). Talcahuano: muestra NO 202. Caleta
Leandro: muestras Nos. 242, 274.

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Europa Septentrional, Costa de Inglaterra,
del Adriático, América del Norte; en ambiente marino.

tl

Género XENOCOCCUS
Thuret in Bornet et Thuret, Notes Algol., 2:73-75, 1880.

Talo en forma de disco o crustáceo, generalmente epifítico. Células esfé-
ricas más o menos angulares debido a la presión mutua; cuando están densa-
mente agregadas, forman una especie de pseudoparénquima que en un co-
mienzo está compuesto por una sola capa de células y luego por varias. Vaina
incolora o amarillenta. Contenido celular homogéneo, azul verdoso o violeta.
División celular en dos planos. Esporangios, cuando existen ubicados en la
periferia; endosporas numerosas.

Xenococcus pyriformis S. et G. in Gardner, Univ. Calif. Publ. Bot., 3:465.
Lám. 39, Fig. 12, 1918.

Talo epifífito, pequeño, solitario, a veces confluente formando un pseudo-
parénquima. Células cuando jóvenes angulares; en la madurez, redondeadas
a piriformes de 9 a 15 y de ancho por 12 a 18 y de largo; protoplasma fina-
mente granular de un color verde azulado. Vaina delgada, hialina, incolora.
Esporangios de igual tamaño que las células vegetativas; endosporas nume-
rosas, de 2.5 a 3.5 y de diámetro, formadas por sucesivas divisiones del proto-
plasma del esporangio (Figs. 19-21).

HABITAT. Epifítica sobre clorófitas.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestra NO 18. Bellavista: muestra
N9Q 79.

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Bahía de Oregón (EE.UU.); en ambiente
marino.

Género HYELLA
Bornet et Flahault, J. (Morot). 2:163, 1888.

Plantas formando masas enredadas de expansión indefinida, perforando
conchas de moluscos o dentro de otras algas. Filamentos primarios o basales
extendidos horizontalmente: una o más filas de células dentro de una vaina,
frecuentemente con verdaderas ramificaciones; filamentos secundarios cortos,
compuestos principalmente de células grandes y angostas con vainas indivi-
duales, emergiendo de los filamentos basales. División celular en todas di-
recciones. La multiplicación se realiza por la salida de células vegetativas de
la vaina o por endosporas formadas por divisiones sucesivas del contenido
celular. Estas provienen de esporangios desarrollados en cortas ramas de los
filamentos basales o por modificaciones celulares de los mismos.

e

Hyella caespitosa Bornet et Flahault, J. (Morot) 2:163, 1888.

Talo al comienzo formando pequeñas manchas o puntos; llegando luego
a ser membranáceo formando cojines de color café oliváceo de 1 a 2 mm de
amplitud. Filamentos erectos, generalmente paralelos, de alrededor de 10 y
de diámetro y 100 a 200 y de largo, irregularmente ramificados. Células vege-
tativas generalmente de 3 a 6 y de diámetro, raramente 10 po las basales más
pequeñas, de formas globosas o angulares; a menudo muchas filas de células
por vaina. Protoplasma de color amarillo a verde azulado. Vaina simple, in-
colora (Figs. 22 y 23).

HABITAT. En conchillas de moluscos.

MATERIAL ESTUDIADO. Bellavista; muestra NO 277. Punta de Parra:
muestra NO 278. Caleta Leandro: muestras Nos. 275, 276.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Probablemente cosmopolita; marina.

Familia DERMOCARPACEAE
Crouan, Ann. Sci. Nat. Bot., 9:70, 1858.

Género DERMOCARPA
Crouan, Ann. Sci. Nat. Bot., 9:70, 1858.

Células generalmente epifíticas, esféricas, ovoides, piriformes o estrecha-
mente cuneiformes; a menudo agregadas en racimos densos, ocasionalmente
solitarias. Protoplasma homogéneo, finamente granular, de color azul verdoso,
café o violeta. Vaina gruesa generalmente homogénea, hialina. División vege-
tativa ausente. Multiplicación sólo por endosporas.

CLAVE PARA LAS ESPECIES

1. Esporangios esféricos de 7 a 15 y de diámetro oocncinninainninaonanos D. sphaerica
1. Esporangios esféricos o suavemente aovados de 18 a 21 ¡, de diámetro
O A A D. sphaecroidea

Dermocarpa sphaerica S. et G. in Gardner, Univ. Calif. Publ. Bot.. 2:457,
Lám. 39, Fig. 14, 1918.
Células esféricas, solitarias o contiguas, de color verde azulado a negruzco;
contenido celular finamente granular. Vaina hialina, homogénea de la 1.5 u
de espesor. Esporangios esféricos de 7 a 15 y de diámetro; endosporas esfé-

==

ricas numerosas y de un tamaño que oscila entre 2 a 3 y de diámetro, formadas
por división simultánea del protoplasma del esporangio (Figs. 24 y 25).

HABITAT. Epifítica sobre filamentos de Calothrix crustacea y Lyngbya
confervoides.
MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 12, 15, 28, 36, 37, 40,
41, 42 (sobre C. crustacea) y 279 (sobre L. confervoides). Punta de Parra: mues-
tra NQ 87, Cerro Verde: muestras Nos. 127, 128, 132, 162.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. En las costas de los estados de Washington

(Whidbey Island) y California; en ambiente marino.

Dermocarpa sphaeroidea S. et G. in Gardner, Univ. Calif. Publ. Bot., 2:440,
Fám. 36, Fig. 7, 1918.

Células esferoideas o ligeramente aovadas, solitarias o formando pequeños
agregados; contenido celular de color azul verdoso pálido, finamente granular.
Esporangios de 18 a 21 y de diámetro, con endosporas numerosas de 3 y de
diámetro. esféricas, las cuales se forman por división total del esporangio

(Fig. 26).

HABITAT. Epifítica sobre Porphyra sp.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 2, 23, 49. Bellavista:
muestras Nos. 60, 65. Punta de Parra: muestras Nos. 105, 114.

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. San Francisco, California; en ambiente
marino.

Orden HORMOGONALES
Wettstein, Handb. Syst. Bot. 3rd. ed., 1924.

Familia MASTIGOCLADACEAE
Geitler, Synopt. Darst. Cyan., Beih. Bot. Centralbl. 41(2):41, 1925.

Género KYR TUTIHARPE
Ercegovic, Arch. Protistenk., 66:170, Fig. 3, 1929.

Plantas amplias, irregularmente expandidas sobre el sustrato, planas,
crustáceas, delgadas, firmes, compuestas por una sola capa de filamentos com-
pactos y paralelos, a menudo fijos por la parte media del tricoma y con ambos

pa,

extremos libres plegados orientados hacia la superficie de la planta. Vaina

firme, hialina, amarilla a café amarillenta en los extremos. Tricomas solitarios

dentro de una vaina, atenuados hacia los ápices. Heterocistos presentes en

posición intercalar. Multiplicación por hormogonios, rara vez por esporas.
Plantas marinas que viven sobre diversos sustratos.

Kyrtuthrix maculans (Gom.) Umezaki, Mem. Coll. Agric. Kyoto Univ., Special
Number:64, 1958.

Plantas saxícolas de color verde azulado. Filamentos geminados de 10 a
22 y de ancho y de unos 100 a 400 y de longitud; tricomas 3.5 a 6 y de
diámetro, contraídos a nivel de las paredes transversales, levemente atenuados
hacia los ápices. Células vegetativas de tamaño variable, desde más cortas
que anchas hasta más largas que anchas, de 3 a 10 ¡ de largo. Heterocistos
intercalares de forma y tamaño variable, casi cuadrados o ligeramente rectan-

”-

gulares, de 5 y de ancho por 10 ¡ de largo (Figs. 27 y 28).

HABITAT. Sobre rocas en borde de pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestra NO 9 (junto a Entophysalis
granulosa).

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile. Se encontró
en una sola muestra pero en forma abundante junto a E. granulosa.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Probablemente cosmopolita; marina.

Familia RIVULARIACEAE
Kuetzing, Phycol. gener., 1843.

Género CALOTHRIX
Agarth, Syst. Algarum, 24, 1824.

Filamentos solitarios o formando pequeños grupos ordenados en forma
radial o cespitosa sobre el sustrato, pudiendo ser ramificados o no; tricomas
atenuados hacia el ápice terminando frecuentemente en un pelo. Vainas firmes,
delgadas, hialinas y homogéneas en filamentos jóvenes, gruesas, coloreadas y
estratificadas en los adultos. Heterocistos basales y/o intercalares, solitarios o
en serie. División vegetativa por hormogonios, rara vez por aquinetas.

AÑ

CLAVE PARA LAS ESPECIES

Il. Filamentos simples, de 8 a 10 ¡ de diámetro. Heterocistos basales
A A C. scopulorum

1. Filamentos falsamente ramificados, de 12 a 25 p de diámetro. Hetero-
stos basales; 6rintercalares 1 uosconeraaaedresnicnc aia A Ad C. crustacea

Calothrix crustacea Thuret in Bornet et Thuret, Notes algol., 1:13, Lám. 4,
1876.

Planta cespitosa de color verde negruzco o café oscuro. Filamentos erectos
de hasta 2 mm de largo y 12 a 25 ¡ de diámetro, levemente engrosados en
la base. Tricomas de color verde azulado o café amarillento, contraídos a nivel
de las paredes transversales, de 5 a 15 y de diámetro, algo ensanchados en
la base y adelgazándose hacia el ápice para terminar en un pelo. Vainas firmes
incoloras en los filamentos jóvenes y de color café amarillento en los adultos:
estratificada. de hasta 6 y de grosor. Células vegetativas cortas, de-2:295 y
de largo; contenido celular homogéneo. Heterocistos basales (1-4) e intercalares.
los primeros generalmente pequeños y hemisféricos, los segundos cuadrados.
rectangulares o cilíndricos. Multiplicación vegetativa por hormogonios que
se forman en serie y escapan por el ápice del filamento (Figs. 32-39).

HABITAT. Sobre rocas; en Cocholgue sobre plataforma rocosa formando man-
tos aterciopelados de color verde negruzco y café oscuro, en Caleta Leandro
sobre roca vertical como costras secas de color negro.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgeue: muestras Nos. 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9.
12, 14, 15, 16, 23. 24. 28. 29, 30. 36. 37, 40, 41. 42, 43. Punta de Parra: muestra
NO 87. Caleta Leandro: muestras Nos. 222, 232, 239, 255, 265.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; marina.

Calothrix scopulorum (W. et M.) Ag., Syst. Algarum, 70, 1824.

Filamentos café amarillentos. erectos o suavemente curvados. de hasta
1 mm de largo y 8 a 10 , de diámetro, sin falsas ramificaciones. Vaina hialina,
homogénea a anaranjada, estratificada y dilatada en la porción terminal.
Tricomas café o verde amarillento de 7 a 8 de diámetro, gradualmente ate-
nuados hacia el ápice, contraídos a nivel de las paredes transversales. Células
mucho más cortas que anchas. de 1.5 a 2 . de longitud. Heterocistos basales
l a 3, esféricos o elipsoidales: hormogonios, 1 a 3 o más dentro de una vaina
común (Figs. 29-31).
HABITAT. Sobre rocas en borde de pozas de marea.

a

MATERIAL ESTUDIADO. Punta de Parra: muestra NQ 87. El material estu-
diado presenta un tamaño menor que el dado por la generalidad de los autores
para esta especie, 8-15 y de diámetro.

DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para ambiente marino; Estero de Re-
loncaví e Iquique (Levring 1960, p. 27).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en ambiente marino y salobre.

Familia SCYTONEMATACEAE
Kuetzing, Phycol. gener., 1843.

Género PLECTONEMA
Thuret, Essai classific. Nost., 375, 1875.

Filamentos libres, flexibles, más o menos curvados, presentando falsas
ramificaciones solitarias o geminadas. Vaina firme, incolora o raramente co-
loreada. Tricomas frecuentemente contraídos a nivel de las paredes trans-
versales; ápice del tricoma derecho, raramente atenuado, sin caliptra.

Plectonema battersii Gomont, Bull. Soc. Bot. France, 46:36, 1899.

Filamentos largos, entrelazados, curvados, con frecuentes falsas ramifica-
ciones solitarias o geminadas. Vaina incolora, firme, bastante gruesa en el
filamento principal y más delgada en las ramificaciones. Tricomas de 3 a 6 y
de diámetro, contraídos a nivel de las paredes transversales, de color verde
azulado, suavemente atenuados hacia los ápices. Células vegetativas mucho más
cortas que anchas; contenido celular homogéneo, finamente granular. Célula
apical redondeada (Fig. 40).

OBSERVACIONES. En material en cultivo, se observaron tricomas muy re-
plegados dentro de la vaina, formando ovillos. Estados semejantes han sido
observados por Setchell y Gardner (1919), Halperin (1967) en tricomas viejos,
y por Lindsted (1943) en material en cultivo.

HABITAT. Sobre rocas.
MATERIAL ESTUDIADO. Caleta Leandro: muestra NQ 216.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Probablemente cosmopolita; costas de No-
ruega y Suecia, Inglaterra, Mar Mediterráneo, América del Norte, Tristan da
Cuhna. En ambiente marino.

7

Familia OSCILLA TORIACEAE

(Gray, 1821) Bory de St. Vincent, Dict. class, hist. nat., 12, 1827.

Género SPIRULINA
Turpin, Dict. Sci. Nat., 50, 1829.

Tricomas sin vaina, solitarios o formando agrupaciones mucosas, cilín-
dricos, enrollados en una hélice floja o apretada. Tabiques celulares visibles
en las especies grandes, prácticamente invisibles en las pequeñas. Contenido
protoplasmático homogéneo.

Presentes en aguas marinas, continentales y termales.

CLAVE PARA LAS ESPECIES

A E A 2 A Sp. breviarticulata
1.— Tricomas generalmente pequeños, sin paredes transversalmente no-
torias.
2.— Espiras separadas entre sí.
3.— Tricomas sueltamente espiralados en forma irregular; espiras

de 3.5 a 5.5 pu de diámetro oocooncnonornrcncacocosaninnas Sp. meneghiniana
3.— Tricomas sueltamente espiralados en forma regular; espiras
e ie Sp. albida
2.— Espiras tocándose unas con otras,
4.— Tricomas de 0.8 a 1 y. de DAME Sp. labyrinthiformis

E Tricomas deL 2.2 de diámetro ra idad Sp. subsalsa

Spirulina albida Kolkwitz, Kryptogamen-Fl. Brandenb., 5:137, 1909.

Tricomas cortos, flexibles, laxamente espiralados, de color verde azulado
pálido de 0.8 a 1 de diámetro. Espiras regulares de 1.5 y de diámetro sepa-
radas entre sí por una distancia de 4 ¡. Contenido protoplasmático homo-
géneo (Fig. 43).

HABITAT. Sobre rocas, entre otras algas y en plancton de pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Punta de Parra: muestras Nos. 106 (junto a
Nematoradaisia laminariae), 107. Cerro Verde: muestra NQ 156. Talcahuano:
muestras Nos. 209 y 211 (junto a Oscillatoria nigro-viridis) y 212 (planctónica
en pozas de marea, junto a Oscillatoria limnetica). Caleta Leandro: muestras
Nos. 213 y 215 (planctónica en pozas), 219, 220, 246 (la última, junto a
Spirulina labyrinthiformis y Oscillatoria brevis).

NE.

DISTRIBUCION EN CHIEE. Citada para aguas salobres como Spirulina sub-
salsa Oersted; Estero Lenga, Prov. de Concepción (Rivera, Parra, González
1973, p- 49 Tám. 8, Fig. 2).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Alemania; en ambiente continental.

Spirulina breviarticulata (S. et G.) Geitler in Rabenhorst's Kryptogamen-Fl.:
922, Fig. 59la, 1932.

Tricomas largos, muy sueltamente ondulados en espiras más o menos re-
gulares, de 12.9 a 18 ¡ de diámetro, del mismo grosor en toda su extensión,
generalmente entrelazados unos con otros, no contraídos a nivel de las pa-
redes transversales. Células muy cortas, de 2.3 a 3 y de largo; protoplasma
verde azulado con granmulaciones irregularmente dispersas a lo largo de la
célula; pared celular delgada, notoria. Célula terminal convexa (Figs. 46 y 47).

HABITAT. Sobre rocas y en plancton de pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 42 y 43 (plancton en
pozas). Punta de Parra: muestras Nos. 84, 114, Caleta Leandro: muestras Nos.
224 (plancton en pozas), 226, 245, 254 (la última, en pozas de marea), 266.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. San Francisco, California; en ambiente

marino.

Spirulina labyrinthiformis Gomont, Monogr. Oscill., 16:255, 1892.

T'ricomas largos, de color verde azulado claro, de 0.8 a 1 de diámetro.
Espiras regulares, compactas, de 2.2 a 2.5 y de diámetro (Fig. 44).

HABITAT. Sobre rocas y en pozas de marea junto a otras algas.
MATERIAL ESTUDIADO. Bellavista: muestras Nos. 70 (en pozas de marea),
76 (sobre roca junto a Oscillatoria laetevirens). Punta de Parra: muestra NO 113
(en pozas de marea junto a Oscillatoria brevis y Merismopedia glauca). Caleta
Leandro: muestras Nos. 246 (en pozas de marea junto a O. brevis), 254 (en
pozas de marea junto a Spirulina breviarticulata).

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en aguas termales, salobres

y Marinas.

Spirulina meneghiniana Zanardini, Atti R. Ist. Venet., 6:80, 1847.

Tricomas largos, flexibles, curvados, de 1 a 2 u de ancho, espiralados
irregularmente; espiras de 3.5 a 5.5 y de diámetro. Distancia entre espiras
45 a 6 up. Contenido celular homogéneo de color verde azulado claro (Figs. 41
y 42).

2

OBSERVACIONES. En los ejemplares estudiados, la distancia entre una e€s-
pira y otra es mayor que la dada por la mayoría de los autores para ella
Ba 5 p)

HABITAT. En pozas de marea entre otras algas.

MATERIAL ESTUDIADO. Talcahuano: muestra NO 194, Caleta Leandro:
muestra NQ 254.

DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas salobres como pirulina
subsalsa Oersted; Estero Lenga, Prov. de Concepción (Rivera, Parra, González
1973, p. 49, Lám. 5, Fig. 1).

DIsIfkibltCION GEOGKAFICA. Probablemente cosmopolita; en aguas sala-

das, sauwwobres y termales.

Spirulena subsalsa Oersted, Nat. Tidskr., 17, Lám. 7, Fig. 4, 1842.

lricomas de l a 2 de diámetro, de color verde amarillento con conte-
nido cesular finamente granuloso, Espiras de 2 a 3 y de diametro tocandose
unas con otras. (En algunos ejemplares se observaron espiras algo separadas
unas de otras, principalmente en ¿05 extremos del tricoma) (Fig. 45).

HABITAÍ. Soure rocas entre otras algas.

MALERIAL 51 UDIADO. Cochoigue: muestras Nos. 6, 8 (entre filamentos
de Caiothrix crustacea), 35, 45. Laicahbuano: muestra NQ 206.

MsyTRIBUCION EN CHILE. No habia sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEruGKAfFICA. Cosmopolita; tanto de ambientes dulce-
acuicolas como marinos.

Género OSCILLATORIA
Vaucher, Hist. conf., 165, 1803.

Tricomas solitarios o formando agrupaciones libres o adheridas a diversos
sustratos, no rameficados, desprovistos de vaina o a veces con una vaina fina
más o menos mucosa, derechos o flexibles, contraídos o no a nivel de las
paredes transversales, atenuados o no hacia los ápices; ápices derechos o cur-
vados. Células terminal con cofia o caliptra en algunas especies. Multiplica-
ción por hormogonios.

Marinas, dulce-acuícolas, de aguas termales, salobres y terrestres.

ho de

CLAVE PARA LAS ESPECIES

1.— Células muy cortas (máximo 1% del ancho de largo).

2.— Tricomas de 17 a 29 y de ancho occancoonononororacoronanonnconos O. marganitifera
OA picomas dera mi p MANO rl O. nigro-viridis

1.— Células más largas (más de 1% del ancho de largo).
3.— Tricomas ligeramente atenuados hacia los extremos.

4.— Tricomas contraídos a nivel de las paredes transversales.
5.— Tricomas hasta 2 y de ancho .ococioncconinrnneneninnonoess O. limnetica
== IIcCOMas mas anchos tota A Te O. aff£. hamelú

4.— Tricomas no contraídos a nivel de las paredes transversales.
6.— Tricomas 2 a3 pu de ancho.

7.— “Tricomas de color amarillo pálido; células tan largas

como anchas o un poco más largas que anclas ........
A PA a o ceca O. gertler:

7.— T'ricomas de color azulado pálido; células dos a tres
veces más largas que anohas o.ooccononoonomoonoroncos» O. amphibia
6.= ¡ricomas más anchos, e.asmonsascnensansrocinozs00os ASCO: O. thiebautit

3.— Tricomas con los extremos notoriamente atenuados.
8.— Tricomas contraídos a nivel de las paredes transversales.
9.— Tricomas de color verde amarillento, de 3 a 5 y de ancho
eo id e A A e AL O ADO RAOS
8.— Tricomas no contraídos a nivel de las paredes transversales.
10.— Células terminal capitada. Células vegetativas tan largas
como anchas o un poco más largas ..occccononnnins.. . O, prolifica
10,— Célula terminal no capitada. Células vegetativas más
cortas que anchas .......o.comononor» IR IA O. brevis

Oscillatoria amphibia Agardh, Flora, 10:632, 1827.

Tricomas generalmente curvados, de color azul verdoso claro, de 2 a 3 p
de ancho; no contraídos a nivel de los tabiques transversales, ápices no ate-
nuados. Células 2 a 3 veces tan largas como anchas, de 3 a 8.5 y de largo;
contenido celular homogéneo, finamente granular. Célula apical redondeada,
sin caliptra (Figs. 48 y 49).

HABITAT. Sobre rocas en borde de pozas de marea.
MATERIAL ESTUDIADO. Punta de Parra: muestra NY€ 110.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en ambientes dulceacuícolas,
salobres, termales y terrestres, raramente marinas.

Os

Oscillatoria brevis (Kuetz.) Gomont, Monogr. Oscill.: 229, Lám. 7, Figs. 14-15,
1892.
Tricomas relativamente cortos, de color azul verdoso claro, no contraídos
a nivel de los tabiques transversales, de 3.6 a 6 p de ancho; ápice, en general,
bruscamente atenuado, curvado. Células de 2.3 a 3 y de largo; contenido
celular finamente granular. Célula apical sin caliptra (Fig. 50).

HABITAT. Sobre rocas en borde de pozas de marea y sobre limo en aguas
salobres.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestra NO 18. Punta de Parra: mues-
tras Nos. 86 (junto a Oscillatoria nigro-viridis, 113 (junto a Phormidium sub-
membranacerm, Spirulina labyrinthiformis y Merismopedia glauca), 117. Canal
El Morro: muestras Nos. 169 (junto a Oscillatoria nigro viridis), 176 (junto a
Oscillatoria nigrowviridis y Oscillatoria margaritifera). Talcahuano: muestra
NQ 185. Caleta Leandro: muestra NO 246 (junto a Spirulina labyrinthiformis).
DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas continentales; Santiago (Li-
cuime 1963, p. 51, Lám. B-5).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en ambiente dulceacuícolas,
salobres y marinos.

Oscillatoria gertlerr Frémy, Arch. Bot. Mém., 216, Fig. 185, 1930.

Tricomas muy largos de color amarillo pálido, de 3 de ancho, no con-
traidos a mivel de las paredes transversales y del mismo grosor en toda su
longitud. Células vegetativas de 3 a 4.5 y de largo; contenido celular homo-
géneo, finamente granular. Célula terminal redondeada con membrana ex-
terna algo engrosada, sin caliptra (Fig. 51).

HABITAT. En plancton de pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Punta de Parra; muestra NO 116 (junto a
Spirulina breviarticulata).

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Africa Ecuatorial, en ambientes continen-
tales.

Oscillatoria aff. hamelii Frémy, Arch. Bot. Mém., 218, Fig. 187, 1930.

Tricomas más o menos curvados, incoloros, de 4 a 4.5 de diámetro, leve-
mente contraídos a nivel de los tabiques transversales y del mismo grosor en
toda su longitud. Células de largo muy variable, de 2 a 5 u de largo; contenido
celular homogéneo, finamente granular. Célula terminal redondeada, sin ca-
liptra (Fig. 52).

A

OBSERVACIONES. En los ejemplares observados, las células son más cortas
que en las dadas por el autor de la especie (7.2 a 8 y de longitud).
HABITAT. Sobre rocas en borde de pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Punta de Parra: muestra NO 111 (junto a Oscilla-
toria laetevirens).

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Africa Ecuatorial, en aguas dulces estan-

cadas.

Oscillatoria lactevirens (Crouan) Gomont, Monogr. Oscill.: 226, Lám. 7, Fig. 11,
1892.

“Tricomas largos a cortos, de color café amarillento o verde azulado claro,
brusca o gradualmente atenuados hacia el ápice o hacia ambos extremos, de
3 a 5 u de ancho, levemente contraídos a nivel de los tabiques transversales;
ápice curvado. Células vegetativas de 2.5 a 5 y de largo, con granulaciones de
diferentes tamaños distribuidas en toda la célula. Célula apical más o menos

obtusa, no capitada, sin caliptra (Fig. 53).

HABITAT. Sobre rocas en bordes de pozas de marea y sobre limo en aguas
salobres.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 33, 40 (la última crece
junto a Calothrix crustacea). Bellavista: muestras Nos. 58 (junto a Oscillatoria
nigro viridis), 76 (¡unto a Spirulina labyrinthiformis). Punta de Parra: muestra
N9 111. Canal El Morro: muestra NO 169 (sobre limo junto a Oscillatoria nigro-
viridis). Talcahuano: muestras Nos. 185 y 191 (junto a Oscillatoria limnetica).
Caleta Leandro: muestras Nos. 220, 228, 257, 270 (todas junto a Oscillatoria
nigro-viridis)..

DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas salobres como Porphyrosi-
phon notarisa (Menegh.) Kuetz.; Estero Lenga, Prov. de Concepción (Rivera,
Parra, González 1973, p. 52, Lám. 9, Fig. 6).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Probablemente cosmopolita, tanto de am-
bientes dulce-acuícolas, salobres y marinos.

Oscillatoria limnetica Lemm., Ber. Deutsch. Bot. Ges.: 310, 1900.

“Tricomas derechos o levemente curvados, de color azul verdoso claro, li-
geramente contraídos a nivel de los tabiques transversales, de 1.5 de ancho;
ápice no atenuado. Células de 3 a 10.5 u de largo; contenido celular finamente
granular. Célula apical redondeada, sin caliptra (Fig. 54).

—%-=

HABITAT. En plancton en pozas de marea y sobre limo en aguas salobres.
MATERIAL ESTUDIADO. Canal El Morro: muestras Nos. 176 (junto a
Oscillatoria margaritifera y Oscillatoria okeni), 180, 182, 184 (todas junto a
Oscillatoria thiebautu y Oscillatoria nigro-viridis). Talcahuano: muestras Nos.
191, 203, 212. Caleta Leandro: muestra NO 245.

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en ambientes dulceacuícolas y
marinos.

Oscillatoria margaritifera Kuetz., Tabulae Phycol., 1:31, 1845.

“Tricomas derechos, de co.or verde amarillento, 25 p de ancho, contraídos
a mivel de los tabiques transversales; ápices levemente atenuados, derechos.
Células de 3 a 6 u de largo; contenido celular con gránulos dispersos a ambos
lados de las paredes transversales de las células, Célula apical convexa, con
caliptra poco notoria (Fig. 55).

HABITAT. Sobre limo, en aguas salobres junto a otras cianófitas filamen-
LOSas.

MATERIAL ESTUDIADO. Canal El Morro: muestras Nos. 176, 177, 178
(todas junto a Oscillatoria limnetica, O. thiebautit, O. okeni y O. nigro-viridis).
DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas salobres, como Microcoleus
irriguus (Kuetz.) Drouet; Estero Lenga, Prov. de Concepción (Rivera, Parra,
González -1973,p.152, Eám. 9; Fig. 2).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en ambientes dulceacuícolas,
salobres y marinos.

Oscillatoria nigro-viridis Thwaites in Harvey, Phycol. Brit., 3:39, Lám. 251 a,
1849.

Tricomas generalmente cortos de color verde azulado, de 6.8 a 12.5 p de
diámetro, contraídos a nivel de las paredes transversales; ápices curvados y
ligeramente atenuados. Células vegetativas más cortas que anchas, de 2.4 a 4.5 y
de largo; contenido celular con gránulos dispuestos a ambos lados de las pa-
redes transversales. Célula apical levemente capitada con la membrana externa
algo engrosada (Figs. 56 y 57).

OBSERVACIONES. O. nigro-viridis es una de las especies que se encuentra
más ampliamente distribuida en la Bahía de Concepción. Se presenta general-
mente como filamentos cortos, curvados en ambos extremos. Las granulaciones
presentes a ambos lados de las paredes transversales de las células se presen-

He

taron en forma constante, a pesar de que en algunos ejemplares el protoplasma
aparecería prácticamente homogéneo.

HABITAT. Sobre rocas y limo en aguas salobres.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 8, 16, 24, 40, 48. Bella-
vista: muestra NQ0 58. Punta de Parra: muestras Nos. 83, 84, 86, 116. Cerro
Verde: muestras Mos. 124, 125, 148, 163, 164. Canal El Morro: muestras Nos.
168, 169, 170, 171, 172, 173, 175, 176, 177, 178, 179, 180, 182, 184 (todas sobre
limo en aguas salobres). “Talcahuano: muestras Nos. 196, 208, 209, 211. Caleta
Leandro: muestras Nos. 218, 220, 228, 234, 254, 257, 258, 270.
DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas salobres, como Oscillatoria
lutea Agardh; Estero Lenga, Prov. de Concepción (Rivera, Parra, González
1973, p. 50, Lám. 8, Fig. 9).

DISTRIBUCION GEOGHKAFICA. Cosmopolita; en ambientes dulceacuícolas,
salobres y marinos.

Oscillatoria okentú Agardh, Flora, 10:633, 1827.

lricomas café verdosos, de 3.5 a 7.5 y de ancho, derechos, contraídos «u
nivel de las paredes transversales, gradua/mente atenuados hacia el ápice; ápice
curvado. Células de 2.5 a + pu de largo; contenido celular finamente granu-
1oso. Célula apical del mismo largo que ancho o a veces hasta 5 p de largo,
obtusa, no capitada, sin caliptra (Fig. 58).

HABITAT. Sobre limo en aguas salobres.

MATERIAL ESTUDIADO. Canal El Morro; muestras Nos. 171, 173 (las dos
junto a Oscullatoria nigro-viridis), 115 (junto a Oscillatoria nigro-viridis y O.
thiebauti1).

DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas continentales, Santiago (Li-
cuime 1963, p. 51, Lám. B-6).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Europa, América del Norte y Africa; en am-
bientes marino y dulce-acuícola,

Oscillatoria prolifica (Grev.) Gomont, Monogr. Oscill., 16:205, Lám. 6, Fig. 8,
1892.

Tricomas de 3 y de ancho, derechos, flexibles, no contraídos a nivel de
los tabiques transversales; cuando adultos gradualmente atemuados hacia el
ápice. Células cuadradas o un poco más largas que anchas, de 3 a 4.5 y de
largo; contenido celular con gránulos distribuidos a ambos lados de las paredes
trasversales. Célula apical levemente atenuada; caliptra cónica, comprimida
(Fig. 61).

e

HABITAT. Sobre rocas.

MATERIAL ESTUDIADO. Caleta Leandro: muestra NO 272.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Citada sólo para ambientes dulceacuícolas;
Europa y Norte América.

Oscillatoria thiebautii (Gom.) Geitler in Rabenhorst's Kryptogamen-Fl.: 967,
Bes 617 Cc, d, 1932.

Tricomas relativamente cortos, café verdosos, levemente amarillentos, cur-
vados, de 6 y de ancho, no contraídos a nivel de las paredes transversales;
ápices no atenuados. Células de 6.5 a 10 y de largo; contenido celular con
numerosos gránulos notorios en toda la célula. Célula terminal redondeada,
no capitada, sin caliptra (Figs. 59 y 60).

HABITAT. Sobre limo en aguas salobres junto a otras Cianófitas filamentosas.
MATERIAL ESTUDIADO. Canal El Morro: muestras Nos. 170, 175 (en las
dos junto a Oscillatoria nigro-viridis), 177 (junto a O. nigro-viridis y O. okenia),
180 (junto a O. nigro-viridis), 182 (junto a O. nigro-viridis y O. limnetica).
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. En ambiente marino; Océano Atlántico
(Islas Canarias y Bermuda): Mediterráneo (Francia e Italia); Indias Occiden-
tales (Bahamas y Guadeloupe); Costa Atlántica de Norte América (Florida);
Sudamérica (Brasil); Océano Pacífico (Hawaii); Sureste de Asia (Indonesia y
Malaya).

Género PHORMIDIUM
Kuetzing, Phycol. gener., 190, 1843.

Filamentos no ramificados, libres o adheridos a diversos sustratos. Vainas
delgadas, hialinas, algunas veces mucosas, más o menos difluentes. Tricomas
a veces contraídos a nivel de los tabiques transversales; ápices atenuados o
no, derechos o curvos. Célula apical capitada o no, con o sin cofia. Plantas
terrestres, dulceacuícolas, menos frecuentemente marinas.

CLAVE PARA LAS ESPECIES

1.— Tricomas notoriamente contraídos a nivel de las paredes transversales,
con los extremos no capitados ni agudos.
2.— Filamentos cortos; tricomas 1.5 a 2 p de “ANCHO ¿E E.. E E

2.— Filamentos largos; tricomas 2.7 a 3.5 py de ancho ooccenccininnoanso» Ph. molle
1.— “Tricomas apenas contraídos a nivel de las paredes transversales, con
los extremos capitados y Agudos cooccncononconconicnconoonannss Ph. submembranaceum

Phormidium ectocarpt Gomont, Bull. Soc. Bot. France, 46:37, Lám. 1, Fig, 13,
1899.

Filamentos cortos, derechos o levemente curvados; vaina hialina, a veces
difluente. Tricomas de color verde azulado pálido, de 1.5 a 2 p de ancho,
contraídos a nivel de los tabiques transversales; ápices no atenuados. Células
un poco más cortas o más largas que anchas, de 1 a 2.5 y de largo; contenido
celular homogéneo, finamente granular. Célula apical redondeada (Fig. 62).

HABITAT. Epifítica sobre clorófitas o adherida a un sustrato rocoso.
MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 18, 19, 20, 21, 23, 37, 42.
Punta de Parra: muestra NQ 83 (epifítica sobre clorófitas). Caleta Leandro:
muestra NQ 240 (epifítica sobre clorófitas).

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. En ambiente marino; costa Atlántica de
Europa (Suecia, Dinamarca, Francia, Islas Británicas), Mar Rojo.

Phormidium molle Gomont, Monogr. Oscill., 16:163, Lám. 4, Fig. 12, 1892.

Filamentos largos, generalmente flexibles, de color verde azulado claro.
Vaina hialina, difícil de observar. Tricomas derechos o curvados de 2.7 a 3.5 y
de ancho, notoriamente contraídos a nivel de las paredes transversales. Células
vegetativas cortas o más largas que anchas de 3 a 5 u de largo; contenido ce-
lular finamente granuloso. Célula apical redondeada (Figs. 65-67).

HABITAT. Sobre tierra.
MATERIAL ESTUDIADO. Talcahuano: muestra NO 207.
DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Probablemente cosmopolita. En ambientes
continentales, menos frecuentemente en salobres o marinos.

Phormidium submembranaceum (Ard. et Straff.) Gomont, Monogr. Oscill., 16:
180, Lám. 5, Fig. 13, 1892,

Filamentos largos, flexibles, dentro de un mucílago hialino y amorfo.
Vainas tenues, difluentes, difíciles de distinguir. Tricomas verde azulados, de
3 a3.5 u de ancho, apenas contraídos a nivel de las paredes transversales,
levemente atenuados hacia el ápice. Células de 2.5 a 3.5 y de largo; contenido

— 30

celular homogéneo, finamente granular, Célula apical capitada con caliptra
cónica, comprimida (Figs. 63 y 64).

OBSERVACIONES. El material observado concuerda con la descripción ori-
ginal, salvo que los tricomas son más delgados. Observaciones similares hicieron
Umezaki (1961) para ejemplares recolectados en la Península de Shima, Japón,
y Halperin (1967) para el material recolectado en Puerto Deseado y Cabo
Blanco, Argentina.

HABITAT. Sobre rocas en bordes de pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Punta de Parra: muestra NO 113 (junto a Spiru-
lina subsalsa). Caleta Leandro: muestra NO 218 (junto a Entophysalis granu-
losa y Oscillatoria nigro-viridis).

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. En ambiente marino; Costa Atlántica de
Europa (Francia). Mediterráneo (Italia), Costa Atlántica de Norte América
(Florida, Maine) y Costa Pacífica de Norte América (California).

Género LYNGBYA
Agardh, Syst. Algarum, 25, 1824.

Plantas solitarias o densas, cespitosas, adheridas al sustrato O librenadantes.
Filamentos simples. Vaina firme, delgada, hialina o coloreada, homogénea,
llegando a ser gruesa y estratificada. Tricomas solitarios dentro de la vaina,
sin ramificar u ocasionalmente ramificados, a veces contraídos a nivel de
los tabiques transversales; ápices derechos, obtusos o levemente atenuados.
Célula apical a veces con caliptra. Multiplicación por hormogonios.

Presentes en aguas marinas, continentales, salobres y termales.

CLAVE PARA LAS ESPECIES
l.— Planta epifítica: filamentos enrollados alrededor de la planta hués-
ped:; tricomas de l a 1.5 y de diámetro cococonncnnnnonnnnnnnncarenanaseness L. epiphytica

1.— Planta saxícola; filamentos adheridos por la base; tricomas más anchos.

2.— Tricomas de 4 a 5.7 p de diámetro; pared externa de la célula

ApicA) eORrOs ada anomia quina ta o O O E. lutea
2.— Tricomas de 12 a 14.4 ¡ de diámetro; pared externa de la célula
apical” no enprosadar. dt ocn oa delta EL. confervordes

==

Eyngbya confervoides Agardh, Syst. Algarum, 73, 1824.

Filamentos de color café verdoso, adheridos al sustrato rocoso formando

”

largos mechones de hasta 5 cm de longitud, enredados entre sí. Tricomas café
de 12 a 14.4 pe de diámetro, no contraídos a nivel de las paredes transver-
sales, mo atenuados hacia los ápices. Vainas incoloras, delgadas y homogéneas
en los filamentos jóvenes, gruesas y estratificadas de hasta 6 y de ancho en
los adultos. Células vegetativas mucho más cortas que anchas, de 25 a 3 yu
de longitud, con granulaciones dispuestas a ambos lados de las paredes trans-
versales de las células. Célula apical redondeada con la membrana externa

algo engrosada. Falsas ramificaciones a veces presentes (Figs. 72-74).

HABITAT. Sobre plataforma rocosa.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestra NO 279.

DISTRIBUCION EN CHILE: Citada para aguas marinas; Bahía de Ancud,
Canal de Chacao, Península Laqui, Punta Corona, Archipiélago de Chonos,
Canal Moraleda, Islotes Locos, Bahía de San Vicente, Montemar e Iquique
(Levring 1960, p. 27), Montemar (Alveal 1970, p. 44), Antofagasta y Arica
(Santelices 1966, p. 78).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en aguas marinas.

Eynebya epiphytica Hieronymus in Kirchner in Engler und Prantl, Natuerl.
Planzenfam., la.:67, 898.

Filamentos epifíticos de 15 a 2 y. de ancho, unidos por la base o en forma
de espiral alrededor del alga filamentosa huésped. Vaina hialina, muy delgada.
Tricomas verde azulado claro, de 1 a 1.5 ¡ de diámetro. no contraídos a nivel
de los tabiques transversales; ápices no atenuados. Células de 1 a 2 y de largo:

contenido celular finamente granular. Célula apical redondeada, sin caliptra

(Figs. 68 y 69).

HABITAT. Epifítica en filamentos de Calothrix crustacea y Lyngbya confer
voides.

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 12,
16, 23, 29, 30, 36, 37, 38, 40, 41, 42, 45 y 279.

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Subcosmopolita, tanto en algas de agua
dulce como marina.

Eyngbya lutea (Agardh) Gomont, J. (Morot), 4:354, 1890.

Filamentos flexibles, entrelazados. Vainas finas, incoloras y homogéneas
a gruesas y estratificadas en filamentos adultos. Tricomas café amarillentos o

e

verde azulados, no contraídos a nivel de los tabiques transversales, de 4 a 5.7 y
de diámetro, no atenuados hacia los extremos. Células vegetativas más cortas
que anchas, de 1.5 a 3 u de largo; contenido celular homogéneo, finamente
granular; pared transversal de las células muy poco notoria en algunos tri-
comas. Célula apical redondeada, con la membrana externa algo engrosada
(Figs. 70 y 71).

HABITAT. Sobre rocas.

MATERIAL ESTUDIADO. Cerro Verde: muestra NO 129,
DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas continentales; Santiago (Li-
cuime 1963, p. 51, Lám. B-14).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en aguas marinas, continenta-
les y termales.

Género MICROCOLEUS
Desmazieres, Cat. Pl. Botanogr. Belg., 7, 1823.

Filamentos simples o poco ramificados. Vaimas hialinas, nunca estratifi-
cadas, cuando adultas a veces poco notorias. Tricomas numerosos dentro de
una vaina común, a menudo entrelazados; ápices derechos, generalmente ate-
nuados. Célula apical redondeada, aguda o capitada, rara vez obtuso-cónica.

Plantas saxícolas, en algunos casos endofíticas. En ambiente terrestre,
dulceacuícola, salobre y marino.

Microcoleus tenerrimus Gomont, Monogr. Oscill., 16:355, Lám. 14, Figs. 9-11,
1892.

Filamentos flexibles, por lo general mo ramificados. Vaina homogénea, hia-
lina. Tricomas de 1.5 a 2 y de ancho, más o menos numerosos dentro de una
vaina común, de color azul verdoso claro, entrelazados unos con otros, con-
traídos a nivel de las paredes transversales, atenuados hacia los ápices que
a menudo son curvados. Células vegetativas de 2.5 a 6 y de largo; contenido
celular finamente granular. Célula apical cónica, muy alargada y aguda (Figs.
75-78).

OBSERVACIONES. En la mayoría de los ejemplares observados, los tricomas
se observaron libres, desprovistos de vaina, pudiéndose fácilmente confundir
con especies del género Oscillatoria, pero la longitud y forma típica de la
célula terminal permite su identificación.

HABITAT. Sobre rocas junto a Calothrix crustacea (principalmente) y otras
Cianófitas.

— 33

Encontramos en forma abundante cianófitas filamentosas de la familia
Oscillatoriaceac y pertenecientes en su totalidad al género Oscillatoria. Estas
son: O. margaritifera, O. okeni, O. brevis, O. limnetica, O. nigro-viridis, O.

thiebauttr y O. laetevirens.

4—HForma de vida perforante:

Presente en conchillas de moluscos, dentro del sustrato calcáreo, donde
las cianófitas comparten su habitat con algunas clorófitas. Aquí encontramos
una sola especie: Hyella caespitosa.

HABITAT PLANCTONICO:

Se refiere sólo a las cianófitas que se encuentran en el plancton de pozas
de marea. Tenemos a Microcystis litoralis, Merismopedia glauca, Chroococcus
turgidus, Chroococcus minor, Spirulina breviarticulata y Oscillatoria limnetica.

IL— PARAMETROS ABIOTICOS:

Como las mediciones de temperatura y salinidad no se hicieron en forma
periódica, los datos obtenidos se utilizaron sólo para establecer en qué rangos
de estos parámetros se desarrollan las cianófitas. Así tenemos que la tempe-
ratura varió de 7*C (julio, 1972) a 28.5%C (febrero, 1972), y la S%o de 1.70%.
(Junio, 1972 en Canal El Morro) a 35.153%. (febrero, 1972 en Cocholgue).

En la tabla siguiente se presentan los rangos de variaciones anuales de t*C
y Sí. en las diferentes localidades estudiadas, confirmando la reconocida adap-
tividad de las cianófitas para soportar grandes rangos de variaciones de paurá-
metros abióticos.

38

098 1
(0 zvp 9)
(888'81)
(08183)
(Ls)
(-2600'7)
(0609 1)

ya

¡enur

22805'P

'899'VE

887:91

“1IPP8

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(9031)
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UOLELICA 9p 03U"y

e

HABITAT. Sobre rocas en borde de pozas de marea.

MATERIAL ESTUDIADO. Caleta Leandro: muestra NO 245 (junto a Spiru-
lina breviarticulata y Clorófitas filamentosas).

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Probablemente cosmopolita; en ambiente
marino.

ASPECTOS ECOLOGICOS

I— FORMAS DE VIDA.

Las especies de Cianófitas recolectadas en el ambiente intermareal de la
Bahía de Concepción fueron encontradas en dos tipos de habitats bien de-
finidos que son:

A.— Habitat Bentónico

B.— Habitat Planctónico
Dentro del primero y según si el sustrato era rocas, algas mayores, limo o
conchillas de moluscos, se pudieron distinguir las siguientes formas de vida:

1—. saxícola

2.— epifítica

3.— limícola, y

4.— perforante

1.— Forma de vida saxicola:

De acuerdo a Umezaki (1961), la mayoría de las Cianófitas marinas ben-
tónicas crecen sobre un sustrato rocoso principalmente en el piso mesolitoral
donde a menudo juegan un rol importante en la coloración de las rocas.
Crecen tanto en bandas horizontales como verticales, aunque no en forma tan
conspicua como las algas mayores. Estas condiciones también se cumplen en
la Bahía de Concepción.

En el sustrato rocoso de las diferentes localidades estudiadas encontramos
a un grupo de especies que crecen en el área donde Chthamalus cirratus Dar-
win, alcanza su límite superior en el ambiente intermareal. Esta área corres-
ponde a la parte inferior del piso supralitoral (comunicación personal Prof. M.
T. López *). Aquí encontramos en forma predominante a Calothrix crustacea,
el cual forma mantos oscuros de aspecto aterciopelado sobre el sustrato rocoso,
ocupando grandes extensiones: también, en forma abundante, se encuentra
Entophysalis granulosa formando costras de color café, distribuidas irregular-
mente sobre las rocas. Viviendo junto a C. crustacea encontramos a Microcoleus

* Dpto. Biología Marina y Oceanografía Instituto Biología, Universidad de Concepción, Chile.

iz

tenerrmus y flotando libremente entre sus filamentos a algunas Cianófitas
planctónicas como Chroococcus turgidus y Chroococcus minor. En menor can-
tidad y en forma aislada encontramos a Oscillatoria nigro-viridis, y más rara
aún Oscillatoria prolífica.

Además, se tomaron muestras en aquella área caracterizada por la mayor
densidad y límite inferior de Chthamalus cirratus (piso mediolitoral superior,
según Alvarez, 1964; Stuardo, 1965; Rodríguez, 1967; Alveal, 1971; Núñez, 1972)
donde éste crece junto a Perumytilus purpuratus Lamark. “P. purpuratus puede
considerarse en el área de Tumbes como uno de los principales indicadores del
mesolitoral, dada su abundancia, estabilidad y constancia en el medio” (Al-
varez, 1964). Guiler (1959) y Alveal (1971) ubican a P. purpuratus en el piso
mesolitoral medio e inferior.

La parte superior de este piso, es particularmente muy rico en cianó-
fitas y es probablemente donde crecen la mayoría de las especies saxícolas.
Entre las especies que se encuentran en mayor cantidad tenemos a Oscillatoria
nigro-utridis, Pleurocapsa fuliginosa, Oscillatoria laetevirens, Symploca sp. y
Eyngbya confervoides. Luego, menos frecuentemente, a Spirulina breviarticu-
lata, abundante en pozas de marea entre filamentos de clorófitas, Spirulina
albida, Oscillatoria brevis, Spirulina labyrinthiformis, Spirulina subsalsa, Spi-
rulina meneghiniana y Phormidium ectocarpii, todas estas últimas entre fi-
lamentos de algas superiores o de otras cianófitas.

Kyrtuthrix maculans, Plectonema battersii, Sirocoleus kurzii, Phormidium
molle, Phormidium submembranaceum y Lyngbya lutea se encontraron sólo
en muestras aisladas, pero abundantemente. Finalmente, en forma aislada y
escasa se encontraron a Oscillatoria amphibia, Calothrix scopulorum y Chroo-
coccopsts gigantea.

2.— Forma de vida epifítica:

Algunas especies se han encontrado creciendo exclusivamente sobre algas
marinas mayores y, a veces, sobre otras cianófitas filamentosas. Tenemos así
a Xenococcus pyriformis creciendo sobre una clorófita filamentosa, Dermo-
carpa sphaerica y Lyngbya epiphytica sobre filamentos de Calothrix crustacea
y Eyngbya confervoides, Dermocarpa sphaeroidea sobre Porphyra sp., Nemato-
radaista laminariae sobre un alga superior y finalmente Phormidium ecto-
carpi que puede crecer libremente o ser epifítica.

3.— Forma de vida limicola:

Caracterizada por algas que viven sobre limo. Esta forma de vida se
encontró sólo en un ambiente mixohalino alterado correspondiente a la lo-
calidad Canal El Morro.

> pul

MATERIAL ESTUDIADO. Cocholgue: muestras Nos. 2, 6, 7, 8, 9, 12, 14, 15,
16, 24, 29, 36, 37, 38, 40, 42 (en todas, junto a C. crustacea), 31, 39. Bellavista:
muestra NO 80. Punta de Parra: muestra N0 87 (junto a Entophysalis granulosa
y C. crustacea). Cerro Verde: muestras Nos. 124 (junto a Chroococcus turgidus

y Oscillatoria nigro-viridis), 125, 128. Caleta Leandro: muestras Nos. 218 (junto
a E. granulosa), 222 (junto a C. crustacea), 264, 270.

DISTRIBUCION EN CHILE. No había sido citada para Chile.
DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Cosmopolita; en ambiente marino.

Género SCHIZOTHRIX
Kuetzing. Phycol. gener., 230, 1843.

Tricomas solitarios o raramente mumerosos dentro de una vaina común
que puede ser delgada o gruesa. Vainas incoloras o amarillas, café, rojas o
más raramente violetas. a veces con los extremos vacios y agudos.

Schizothrix calcicola (Agardh) Gomont, Monogr. Oscill., 16:307, Lám. 8, Figs.
1-3. 1892.

Filamentos densamente entrelazados, poco ramificados. Vaina incolora,
firme, delgada en filamentos jóvenes y ancha y ligeramente estratificada cuando
adultos. Tricomas de color azulado de 2 de ancho, levemente contraídos a
nivel de las paredes transversales. Células de 2 a 2.6 y de largo; contenido
protoplasmático finamente granular. Célula apical redondeada, no capitada
y sin caliptra (Figs. 79-81).

OBSERVACIONES. En las muestras estudiadas se encontró una gran cantidad
de tricomas sueltos y vainas vacías.

HABITAT. Sobre rocas junto a Calothrix crustacea.

MATERIAL ESTUDIADO. Caleta Leandro: muestras Nos. 22, 239, 255, 265.
DISTRIBUCION EN CHILE. Citada para aguas continentales; Desierto de
Atacama (Forest y Weston, 1966, pp. 163, 164) y para aguas salobres; Estero
Lenga, Prov. de Concepción (Rivera. Parra, González 1973, p. 51, Lám. $8,
Figs. 5-6).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Posiblemente cosmopolita; en ambientes
continentales y marinos.

Género SYMPLOCA
Kuetzing. Phycol. gener., 201, 1843.

Filamentos al comienzo postrados, luego ascendentes en fascículos erectos,
raramente ramificados; ramificaciones solitarias. Vainas firmes o algo disueltas.

7 e

Tricomas solitarios dentro de una vaina, contraídos a nivel de las paredes
transversales; ápices derechos, a veces ligeramente atenuados. Célula terminal
no capitada, pero a veces con la membrana externa algo engrosada.

Symploca sp.

Planta cespitosa. Vainas hialinas, firmes. Tricomas de color verde azulado
claro, de 2.5 a 5 y de diámetro, levemente contraídos a nivel de las paredes
transversales, ligeramente atenuados hacia el ápice derecho; un sólo tricoma
por vaina. Células vegetativas de 1.2 a 2 y de largo; contenido celular fina-
mente granular. Célula apical redondeada con la membrana externa algo
engrosada (Figs. 82-86).

HABITAT. Sobre rocas entre otras algas.

MATERIAL ESTUDIADO. Bellavista: muestras NO 58 (junto a Entophysalis
granulosa). 60, 69. Punta de Parra: muestras Nos. 83, 114 (en la última, junto
a Spirulina breviarticulata y Phormidium submembranaceum). Cerro Verde:
muestras Nos. 127, 155, 157. 164, 165. Caleta Leandro: muestras Nos. 258 (junto
a Oscillatoria nigro-viridis), 270 (junto a O. laetevirens y Microcoleus tene-
rrimus), y 274 (junto a Pleurocapsa fuliginosa).

OBSERVACIONES. A pesar del abundante material recolectado, no fue po-
sible determinar esta especie. Estudios posteriores, recurriendo a cultivos, per-
mitirán dilucidar su identificación.

Género SIROCOLEUS

Kuetzing. Spec. Algarum, 259, 1849.

Planta cespitosa; filamentos largos, ramificados con vainas firmes o li-
geramente difusas, incoloras. homogéneas: numerosos tricomas, con ápices rec-
tos. dentro de una vaina común, a menudo agregados en fascículos. Célula
apical cónica o redondeada.

Plantas marinas.

Sirocoleus kurzii (Zeller) Gomont, Monogr. Oscill., 16:349, Lám. 14, Figs. 3-4,
1892.

Filamentos verde azulados, de 0.5 mm de largo. Vainas firmes, amplias,
homogéneas, incoloras. Numerosos tricomas (10-20) dentro de una vaina co-
mún. Tricomas de 5 a 6 yu de ancho, de color verde azulado, en la mayoría
de los casos algo atemuados hacia los ápices, no contraídos a nivel de los ta-
biques transversales. Células cortas de 1.5 a 3 ¡ de largo; contenido celular
homogéneo, finamente granular. Célula apical cónica, roma O redondeada,
sin caliptra (Figs. 87-91).

— 35 —

DISCUSION Y CONCLUSIONES

El presente trabajo constituye el primer estudio sobre la flora cianofítica
marina chilena, por lo tanto, aún cuando pueden emitirse juicios taxativos
referentes a la taxonomía, es prematuro hacerlo respecto a la problemática
ecológica del grupo.

I.— RESULTADOS TAXONOMICOS.

El estudio taxonómico de las muestras estudiadas indican la presencia de
21 géneros y 40 especies viviendo en el ambiente intermareal de la Bahía de
Concepción, de los cuales 7 géneros y 23 especies se señalan por primera vez
para Chile.

GÉNEROS:
Entophysalis
Nematoradaisia
Xenococcus
Chroococcopsis
Kyrtuthrix
Plectonema
Sirocoleus

ESPECIES:
Chroococcus minor
Microcystis litoralis
Entophysalis granulosa
Nematoradaisita laminariae
Xenococcus pyriformis
Chroococcopsis gigantea
Dermocarpa sphaerica
Dermocarpa sphaeroidea
Kyrtuthrix maculans
Calothrix crustacea
Plectonema batterst
Spirulina breviarticulata
Oscillatoria amphibia
Oscillatoria geitleri
Oscillatoria limnetica
Oscillatoria prolífica
Oscillatoria thiebautii
Phormidium ectocarpil

— ls

Phormidium molle
Phormidium submembranaceum
Lyngbya epiphytica
Microcoleus tenerrimus

Sirocoleus kurzú
11.— CLASIFICACION DE LAS ESPECIES DE ACUERDO A SU AMBIENTE.

De las 40 especies investigadas, 33 se encontraron en un ambiente ma-
rino, 3 especies en un ambiente mixohalino y 4 especies tanto en ambiente
marino como mixohalino.

Por lo tanto, y de acuerdo a lo anterior, las especies se agrupan en es-
pecies marinas, especies mixohalinas y especies marino-mixohalinas.

A.—ESPECIES MARINAS:

Chroococcus minor
Chroococcus turgidus
Microcystis litoralis
Merismopedia glauca
Entophysalis granulosa
Pleurocapsa fuliginosa
Nematoradaisia laminariae
Xenococcus pyriformis
Chroococcopsis gigantea
Hyella caespitosa
Dermocarpa sphaerica
Dermocarpa sphaeroidea
Kyrtuthrix maculans
Calothrix crustacea
Calothrix scopulorum
Plectonema battersú
Spirulina albida
Spirulina breviarticulata
Spirulina meneghiniana
Spirulina subsalsa
Oscillatoria amphibia
Oscillatoria aff. hamelu
Oscillatoria geitleri
Oscillatoria prolífica
Phormidium ectocarpi

ES

Xenococcus pyriformis
Chroococcopsis gigantea
Kyrtuthrix maculans
Plectonema battersii
Calothrix scopulorum
Spirulina meneghintana
Spirulina subsalsa
Oscillatoria amphibia
Oscillatoria geitleri
Oscillatoria margaritifera
Oscillatoria okeniú
Oscillatoria prolifica
Oscillatoria thiebautit
Eyngbya confervoides
Eyngbya epiphytica
Eyngbya lutea
Phormidium molle
Phormidium submembranaceum
Schizothrix calcicola
Sirocoleus kurzú

presentaron una distribución restringida.

4.— Las estaciones en las cuales se colectaron la mayor diversidad y número de
especies correspondieron a Caleta Leandro, Punta de Parra y Cocholgue; en
menor grado a Bellavista, Cerro Verde y Talcahuano y finalmente, Canal
El Morro donde el múmero es más restringido debido probablemente a que
es un ambiente mixohalino alterado.

Analizando los resultados y viendo la gran cantidad de parámetros que
de una u otra forma están implicados en un estudio de esta naturaleza, esta
es una investigación que permitirá efectuar en el futuro una variada gama
de estudios referentes al rol de las cianófitas en el ambiente intermareal como,
por ejemplo, el papel que cumplen en la colonización de las rocas, distribución
vertical con construcción de perfiles, periodicidad estacional, estudio de co-
munidades algológicas, etc.

LT AMA

TABLA DE DISTRIBUCION DE LAS CIANOFITAS ENCONTRADAS
EN LA BAHIA DE CONCEPCION

PARRA

MORRO

CALETA LEANDRO
EL

BELLAVISTA
CERRO VERDE
TALCAHUANO

COCHOLGUE
PUNTA DE

CANAL

|

Chroococcus minor

+
q

Chroococcus turgidus

+ +
+ +

Microcystis litoralis
Merismopedia glauca
Entophysalis granulosa El
Pleurocapsa fuliginosa

++ +++
++++

Nematoradaisia laminariae
Xenococcus pyriformis +
Chroococcopsis gigantea +
Hyella caespitosa Ab e +
Dermocarpa sphaerica
Dermocarpa sphaeroidea
Kyrtuthrix maculans

+++

+ +++

Calothrix crustacea
Calothrix scopulorum de
Plectonema battersi

Spirulina albida

Spirulina breviarticulata +
Spirulina labyrinthiformis 5
Spirulina meneghintana

Spirulina subsalsa 5 +

Oscillatoria prolifica +
Oscillatoria amphibia -s

Oscillatoria brevis ye + (2RE
Oscillatoria geitleri

Oscillatoria aff. hamelii

Oscillatoria laetevirens 7 +
Oscillatoria limnetica Eh Sl
Oscillatoria margaritifera

+++
++ +++

+++

+++

o 5 «-_ A+

US

En el presente trabajo se ha encontrado:

24 especies saxicolas

Gi

especies epifíticas

especie perforante

=

especies limícolas

¡Sr

especies planctónicas
Umezaki (1961) al estudiar las cianófitas marinas del Japón encuentra:

21 especies saxícolas
11 especies epifíticas
3 especies perforantes
7 especies planctónicas

Aún cuando los resultados anteriores indicarían que las formas de vida
corresponden en su mayor número a especies saxícolas, Halperin (1967) in-
vestigando en la costa Argentina (Puerto Deseado) encontró que el mayor nú-
mero de especies correspondía a una forma de vida limícola (52.3%), seguida
por la saxícola (28.59%), epifítica (14.2%), planctónica (4.79%,) y perforante
(2.3%). Esto podría explicarse por una diferente constitución de la costa y/o
falta de recolección en zonas rocosas.

Se han encontrado especies que habitan más de un tipo de sustrato como:

Spirulina breviarticulata
Phormidium ectocarpi
Oscillatoria brevis
Oscillatoria laetevirens
Oscillatoria limnetica
Oscillatoria nigro-viridis

Esto confirma diferentes citas bibliográficas para las especies señaladas.
Así, Spirulina breviarticulata se encontró formando parte de la forma de vida
saxícola como planctónica. Setchell y Gardner (1919) también la hallaron
viviendo sobre rocas y en pozas de marea. Un caso semejante es Phormidium
ectocarpú que se encontró habitando sobre rocas y sobre otras algas. Geitler
(1932) la cita creciendo sobre Ectocarpus sp. y en limo.

Oscillatoria brevis, Oscillatoria laetevirens y Oscillatoria nigro-viridis se
presentaron creciendo sobre rocas y limo en aguas salobres.

Oscillatoria brevis, Tilden (1910) la encuentra creciendo sobre limo;
Setchell y Gardner (1919) en marismas; Fremy (1933) en limo, rocas y arena
y Umezaki (1961) habitando entremezclada con Cladophora sp. y otras cianó-
fitas en depresiones rocosas de la zona litoral.

e a

Oscillatoria lactevirens, Vilden (1910) la encuentra habitando en marismas
y sobre rocas cubriendo el fondo de pozas de marea; Setchell y Gardner (1919)
y Fremy (1933) en marismas y Umezaki (1961) sobre rocas.

Oscillatoria nigro-viridis, Tilden (1910) la halla creciendo sobre limo, en
marismas y en el plancton; Setchell y Gardner (1919) en marismas; Umezaki
(1961) sobre rocas y Halperin (1967) sobre rocas, tierra y arena.

Finalmente, tenemos a Oscillatoria limnetica que se encontró formando
parte tanto de la forma de vida limicola como planctónica. Geitler (1932) la
cita para el plancton de estanques, lagos y sobre limo; Fremy (1933) la en-
cuentra formando parte del plancton de aguas estancadas más o menos con-
taminadas, dulces o salobres y, a veces, en el mucus de otras algas.

IV.— DISTRIBUCION DE LAS ESPECIES EN EL AREA DE ESTUDIO.

En términos generales podemos decir que la mayoría de las especies iden-
tificadas en el presente trabajo son cosmopolitas (53.6%) o subcosmopolitas
(27%) y sólo un 19.5%, son de distribución más restringida.

Ahora, en lo que respecta a la distribución en la Bahía de Concepción,
al analizar la Tabla 1 se observa que:

1.— Especies como Oscillatoria nigro-viridis, Oscillatoria laetevirens y Micro-
coleus tenerrimus, presentan una amplia distribución a lo largo de la Bahía.

2.— Especies como Microcystis litoralis
Pleurocapsa fuliginosa
Entophysalis granulosa
Hyella caespitosa
Calothrix crustacea
Dermocarpa sphaerica
Dermocarpa sphaeroidea
Spirulina albida
Spirulina breviarticulata
Spirulina labyrinthiformis
Oscillatoria brevis
Oscillatoria limnetica
Phormidium ectocarpit

se presentan sólo en algunas localidades.

3.— Especies como Chroococcus minor
Chroococcus turgidus
Merismopedia glauca

ei

Phormidium molle
Phormidium subimembranaceum
Eyngbya confervordes

Lyngbya epiphytica

Lyngbya lutea

Microcoleus tenerrimus
Schizothrix calcicola

Sirocoleus kurzil
B.— ESPECIES MIXOHALINAS:

Oscillatoria margaritifera
Oscillatoria okentú
Oscillatoria thiebautú

C.— ESPECIES MARINO-MIXOHALINAS:

Oscillatoria brevis
Oscillatoria limnetica
Oscillatoria laetevirens
Oscillatoria nigro-viridis

De estas 40 especies, 17 ya habían sido señaladas anteriormente para
Chile, ocupando los ambientes que se indican a continuación:

A.— AMBIENTE MARINO:

Chroococcus turgidus
Pleurocapsa fuliginosa
Hyella caespitosa
Calothrix scopulorum
Lynbya confervoides

B.— AMBIENTE MIXOHALINO:

Spirulina meneghiniana
Spirulina albida
Oscillatoria margaritifera
Oscillatoria nigro-viridis
Schizothrix calcicola

BO

CG AMBIENTE DULCEACUICOLA:

Chroococcus turgidus
Merismopedia glauca
Spirulina labyrinthiformis
Spirulina subsalsa
Oscillatoria brevis
Oscillatoria laetevirens
Oscillatoria okenu

Lyngbya lutea

Las cinco especies marinas concuerdan plenamente con los resultados obte-
nidos en el presente trabajo. Esto no sucede respecto a las especies mixohalinas
ya que solo dos de ellas se encontraron en este ambiente y las restantes (Spiru-
una albida, Spirulina meneghiniana y Schizothrix calcicola) se encontraron en
un ambiente marino, lo que confirma las citas de Tilden (1910) y Geitler
(1932).

Aún cuando el presente trabajo se restringió sólo al estudio de las cianó-
litas del ambiente intermareal, se ha considerado especies que anteriormente
habían sido citadas para Chile como especies dulceacuícolas pero que en el
presente trabajo se hallaron ocupando habitats marino y/o mixohalino. En
este sentido los resultados indican que Chroococcus turgidus, Merismopedia
glauca, Spirulina labyrinthiformis, Spirulina subsalsa y Lyngbya lutea viven
en ambiente marino, Oscillatoria okenii en ambiente mixohalino y Oscillatoria
brevis y Oscillatoria lactevirens imdiferentemente en ambientes marino o mixo-
halino, lo cual confirma la reconocida adaptabilidad de las ciamófitas para
soportar grandes variaciones de las condiciones abióticas.

Calothrix crustacea, Entophysalis granulosa y Lyngbya confervordes se en-
contraron formando poblaciones más o menos puras, fáciles de identificar en
terreno.

También es interesante señalar que especies como Chroococcus minor,
Chroococcopsis gigantea, Oscillatoria gettleri y Oscillatoria prolifica habían
sido citadas anteriormente sólo para aguas continentales,

1I.—FORMAS DE VIDA.

Las diversas formas de vida que presentan las cianófitas en el ambiente
intermareal de la Bahía de Concepción reúnen un mayor o menor número
de especies según sean saxícolas, epifíticas, perftorantes y limícolas, además de
aquellas que se encuentran dentro de un habitat planctónico.

e,

PUNTA DE PARRA

BELLAVISTA

COCHOLGUE
CALETA LEANDRO

CERRO VERDE
TALCAHUANO

Oscillatoria nigro-viridis

E
Ñ
+
A
+

Oscillatoria okenti
Oscillatoriía thiebautil
Phormidium ectocarpi + + +
Phormidium molle 5

+

Phormidium submembranaceum Sn ar
Eyngbya confervoides +

Eyngbya epiphytica +

Lyngbya lutea +
Symploca sp. ap as nd
Schizothrix calcicola

Microcoleus tenerrimus ar =F + y
Sirocoleus kurzii

4+++

CANAL EL MORRO

+++

ANEXO I

CIANOFITAS MARINAS DE LA COSTA CHILENA IDENTIFICADAS

HTASTATEL "PRESENTE

Orden: CHROOCOCCALES

Chroococcus turgidus (Kuetz.) Naeg., Gatt. einzell. Alg., 46, 1849.
Distribución: Golfo de Ancud (Levring: 26, 1960).

Gloeocapsa crepidinum Thur., Notes Algol., 1, Lám. 1, Figs. 1-3, 1876.
Distribución: Tierra del Fuego, Isla Gordon (Hariot: 10, 1889).

Orden: CHAMAESIPHONALES

Dermocarpa prasina (Reinsch) Born. et Thur., Notes Algol., 2:73, Lám. 26,

Figs. 6-9, 1880.

Distribución: Bahía Orange e Isla Wollaston (Hariot: 11, 1889); Tierra del

Fuego (Kylin * Skottsherg: 76, 1919); Montemar (Levring: 26, 1960).

A

*Pleurocapsa fuliginosa Hauck, Meeresalgen Deutschl. Osterr. Rabenhorst's
Kryptogamentl., 2:515, Fig. 231, 1885.

Distribución: Tierra del Fuego (Kylin £ Skottsberg: 76k, 1919).

*Ayella caespitosa Bornet et Flahault, J. Bot. (Morot), 2:163, 1888.

Distribución: Sur de Tierra del Fuego (Hariot: 1428, 1892).

Orden: HORMOGONALES

Calothrix confervicola (Roth) Ag., Syst. Algarum, 70, 1824.

Distribución: Canal de Chacao (Levring; 27, 1960).

Calothrix scopulorum (Weber * Mohr) Ag., Syst Algarum, 70, 1824.

Distribución: Estero de Reloncaví, Iquique (Levring: 27, 1960).

Calothrix aeruginea Thuret, Ann. Sci. Nat. Bot., 6, 1:10, 1875.

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Distribución: Estero de Reloncaví, Bahía de Ralún, Bahía Petrohué (Levring:
27, 1960).

Phormidium vulgare Kuetz. var. hookeri Kuetz., Spec. Algarum, 253, 1849.

Distribución: Tierras Australes: Islas Cockburn y Graham (Hariot: 11, 1889).

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Distribución: Estero de Reloncaví, Bahía Ralún (Levring: 27, 1960).

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Distribución: Bahía de Ancud, Canal de Chacao, Península Laqui, Punta Co-
rona, Archipiélago de Chonos, Canal Moraleda, Islotes Locos, Bahía de San
Vicente, Montemar, Iquique (Levring: 27, 1960); Antofagasta, Arica (Sante-
lices: 78, 1966); Montemar (Alveal: 44, 1970).

Lyngbya semiplena Ag., Algae maris Medit. Adriat., 11, 1842.

Distribución: Tierra del Fuego, Bahía Orange (Hariot: 11, 1889).

Microcoleus chtonoplastes (Mert.) Thur., Ann. Sci. Nat. Bot., 6, 1: 378, 1875.

Distribución: Seno de Reloncaví, Canal Tenglo, Bahía Herradura de Guayacán
(Levring: 28, 1960).

Microcoleus Friesii Thuret, Ann. Sci. Nat. Bot., 6, 1: 379, 1875.

Distribución: Tierra del Fuego, Isla Hoste (Hariot: 12, 1889).

* Especies citadas para localidades de ubicación incierta que se han incluido a pesar de que pu-
dieran tratarse de localidades argentinas.

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Fig. 2.— Chroococcus minor (Kuetz.) Naegeli.

Fig. 3.— Chroococcus turgidus (Kuetz.) Naegeli.

Figs. 4 y 5.— Merismopedia glauca (Ehrenb.) Naegeli.

Fig. 6.— Microcystis litoralis (Hansg.) Forti; aspecto de parte de la colonia.
Figs. 7-11.— Entophysalis granulosa Kuetzing. Figs. 7, 8, 9 y 1, disposición de

las células en los bordes del talo; Fig. 10, disposición de las células
en la parte central del talo.

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Fig. 12.— Chroococcopsis gigantea Geitler: células vegetativas y esporangios con
endosporas.

Figs. 13-15,— Pleurocapsa fuliginosa Hauck. Figs. 13 y 14, células vegetativas y
esporangios con endosporas; Fig. 15, células vegetativas.

Figs. 16-18.— Nematoradaisa laminariae (Setchell et Gardner) Geitler. Fig. 16,
aspecto general del talo epifítico; Figs. 17 y 18, filamentos con espo-
rangios.

coo :
Ex

ay

| 19
| | PECAR EOL
19 | A 21, 22

Figs: 1921.=Xe ¡formis Setchell et Gardner; Fig. 19, aspecto del
E nd sitio tico da pets de Clorofita; Fig. 20, cáliz Vegetal
esporangios con endosporas; Fig. 21, células vegetativas
Figs. 22 y los. Hyella caespitosa Bornet et Flahault.

0

¡A O 30,39 NX

AR
Figs. 24 y 25.— Dermocarpa shaerica Setchell et Gardner. Fig. 24, grupo de cé-
lulas en diferentes estados de desarrollo sobre Calothrix crustacea; Fig. 25, espo-
rangio con endospora. Fig. 26.— Dermocarpa sphaeroidea Setchell et Gardner:
células vegetativas y esporangios con endosporas. Figs. 27 y 28.— Kyrtuthrix
maculans (Gomont) Umezaki. Fig. 27, aspecto de los filamentos con heterocistos
intercalares y terminales; Fig. 28, heterocisto intercalar. Figs. 29-31.— Calothrix
scopulorum (W. et M.) Agarth. Figs. 29 y 30, aspecto de los filamentos con 1, 2
y 3 heterocistos terminales; Fig. 31, aspecto de una parte del filamento con gra-
nulaciones a ambos lados de las paredes transversales de las células del tricoma.

20u , 36,37, 38,40
20. 32, 33,34, 35, 39

Figs. 32-39,.— Calothrix crustacea Thuret. Fig. 32. filamento con gruesa vaina
estratificada y nacimiento de falsa ramificación; Fig. 33, extremo de un tricoma;
Fig. 34, hormogonio saliendo del filamento principal; Fig. 35, parte basal de
un falamento con 4 heterocistos terminales; Fig. 36, falsa ramificación; Fig. 37,
serie de hormogonios; Fig. 38, heterocisto intercalar; Fig. 39, parte basal de un
filamento con 2 heterocistos terminales. Fig. 40.— Plectonema battersii Gomont:
aspecto del filamento con trozos de tricoma replegados a manera de ovillos.

51 52

ll

41,49 |
42,43, 44, 45, 47, 48,50; 51,52, 53, 54

Figs. 41 y 42.— Spirulina meneghiniana Zanardini: Fig. 43.— Spirulina albida
Kolwitz. Fig. 44,— Spirulina labyrinthiformis Gomont. Fig. 45.— Spirulina sub-
salsa Oersted. Figs. 46 y 47.—Spirulina breviarticulata (Setchell et Gardner)
Geitler: Fig. 46, aspecto general del tricoma; Fig. 47, presencia de granulaciones
en las células vegetativas. Figs. 48 y 49.— Oscillatoria amphibia Agardh. Fig. 50.—
Oscillatoria brevis (Kuetz.) Gomont. Fig. 51.— Oscillatoria geitleri Frémy.
Fig. 52.— Oscillatoria aff, hamelii Frémy. Fig. 53.— Oscillatoria laetevirens
Crouan. Fig. 54.— Oscillatoria limnetica Lemm.

Fig. 55.— Oscillatoria margaritifera Kuetzing.

Figs. 56 y 57.— Oscillatoria nigro-viridis Thwaites.

Fig. 58.— Oscillatoria okeniú Agardh.

Figs. 59 y 60.— Oscillatoria thiebautu (Gomont) Geitler.

Fig. 61.— Oscillatoria prolifica (Grev.) Gomont.

Fig. 62.— Phormidium ectocarpuú Gomont.

Figs. 63 y 64.— Phormidium submembranaceum (Ard. et Straff.) Gomont:

Fig. 63, aspecto de un filamento; Fig. 64, ápices de 3 tricomas mos-
trando diferencias morfológicas en la célula terminal.

Figs. 65-67.— Phormidium molle Gomont.

EZ

)

|

TH

56,57, 59, 63, 65, 66

58,60, 61,62, 64, 67

72,73,74,793, 76
68,69,71,77, 78

Figs. 68 y 69.— Lyngbya epiphytica Hieronymus. Fig. 68, filamento enrollado
a lo largo del alga huésped (Lyngbya confervoides Agardh); Fig. 69,
filamento adherido por la parte basal del alga huésped.

Figs. 70 y 71.— Lyngbya lutea (Ag.) Gomont.

Figs. 72-74.— Lyngbya confervoides Agardh. Figs. 72 y 73, aspecto general de los
filamentos mostrando diferentes células terminales; Fig. 74, falsa ra-
mificación.

Figs. 75-78.— Microcoleus tenerrimus Gomont. Fig. 75, aspecto de un filamento;
Figs. 76-78, detalle de tres tricomas.

81, 88, 89,90,91
79, 80,85, 86

AAAndA

pe

, aspecto de dos
Figs. 83 y

Figs. 79 y 80

Fig. 81, grupo de filamentos y vainas vacías.

Symploca sp. Fig. 82, aspecto general de la planta;
84, organización de los filamentos; Figs. 85 y 86, trozos de filamentos.

Figs. 87-91.— Sirocoleus kursii (Zeller) Gomont. Fig. 87, aspecto general del

Schizothrix calcicola (Ag.) Gomont:;
filamento observándose vaina común y tricomas; Figs. 88-91, ápices

de 4 tricomas mostrando diferentes células terminales.

filamentos:

86.

Figs. 79-81.—
Figs. 82

INDICE DE TAXA

Calothrix crustacea, 19
Calothrix scopulorum, 19
Chroococcopsis gigantea, 13
Chroococcus minor, 9
Chroococcus turgidus, 10
Dermocarpa sphaerica, 16
Dermocarpa sphaeroidea, 17
Entophysalis granulosa, 12
Hyella caespitosa, 16
Kyrtuthrix maculans, 18
Lyngbya confervoides, 32
Eyngbya epiphytica, 32
Lyngbya lutea, 32
Merismopedia glauca, 11
Microcoleus tenerrimus, 33
Microcystis litoralis, 11
Nematoradasia laminariae, 13
Oscillatoria amphibia, 24
Oscillatoria brevis, 25

Oscillatoria
Oscillatoria
Oscillatoria
Oscillatoria
Oscillatoria
Oscillatoria
Oscillatoria
Oscillatoria
Oscillatoria

gettleri, 25

aff. hamelii, 25
laetevirens, 26
limnetica, 26
margaritifera, 27
nigro-viridts, 27
okenii, 28
prolifica, 28
thiebautii, 29

Phormidium ectocarpi, 30
Phormidium molle, 30
Phormidium submembranaceum, 30
Plectonema battersti, 20
Pleurocapsa fuliginosa, 14
Schizothrix calcicola, 34
Sirocoleus Rkurzit, 35
Spirulina albida, 21
Spirulina breviarticulata, 22
Spirulina labyrinthiformis, 22
Spirulina meneghiniana, 22
Spirulina subsalsa, 23
Symploca sp., 35

Xenococcus pyriformis, 15

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ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE),
EL 16 DE DICIEMBRE DE 1975

WARM RT OOJUIAT MA ATRDÓNA. A TÉR
FA NTHIADICL ALZA ARIAS A AR

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GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una
Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que
los números se publican tan pronto como la Comisión
Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

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GAYANA

INSTITUTO DE BIOEOGTA

BOTANICA 1976 N? 32

GUIA BIBLIOGRAFICA Y DE DISTRIBUCION DE
LAS CIANOFITAS DE CHILE
(excluyendo el continente Antártico)

por

OSCAR O. PARRA y MARIELA GONZALEZ

NEW YORK
SOTANICAL GARDEN

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

INSTITUTO DE BIOLOGIA
UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
CHILE

DIRECTOR :

Dr. Oscar Matthei J.

COMITE EDITOR :

Dr. Oscar Matthei J. Prof. Marco A. Retamal
Prof. Lajos Biro B. Prof. Clodomiro Marticorena

Prof. Ivonne Hermosilla B.

EDITOR EJECUTIVO: Dr. Jorge N. Artigas

GAYANA

ÚS PRAT TO DE BELOEÉUGEA

BOTANICA 1976 No 32

GUIA BIBLIOGRAFICA Y DE DISTRIBUCION DE
LAS CIANOFITAS DE CHILE
(excluyendo el continente Antártico)

por

OSCAR O. PARRA y MARIELA GONZALEZ

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION
Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente
conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

GUIA BIBLIOGRAFICA Y DE DISTRIBUCION DE
LAS CIANOFITAS DE CHILE
(excluyendo el continente Antártico)

por

OSCAR O. PARRA y MARIELA GONZALEZ (*)

RESUMEN

Se hace una revisión bibliográfica de los taxa de Cianófitas citados hasta
el momento para Chile, excluyendo el continente Antártico.

La distribución de 41 géneros, 161 especies y 22 variedades y formas fue-
ron revisadas.

ABSTRACT

A bibliographic review of the taxa of Cyanophyta already cited for Chile
(excluding Antarctic) has been made.
The distribution in Chile for 41 genus, 161 species, 22 varieties and
forms is presented.

IN PRO PUE CG FON

Las algas azul-verdes o Cianófitas, ha sido un grupo relativamente poco
estudiado en Chile si lo comparamos con otros grupos de algas como son las
Feófitas, Rodófitas y Clorófitas.

Ahora bien, considerando la importancia que las Cianófitas han ido
adquiriendo a medida que se incrementan los conocimientos sobre ellas y la

(*) Departamento de Botánica, Instituto de Biología, Casilla 1367, Universidad de Concepción,
Concepción, Chile.

ENS

existencia en Chile de un grupo de investigadores que está estudiando la
flora algológica Chilena, tanto de agua dulce como salobre y marina, hemos
considerado de gran utilidad contribuir con un trabajo que sirva de base y
referencia a cualquiera investigación que se realice en este grupo. Este estudio
viene a complementar el efectuado por Kim (1971), quien recopiló información
sobre Clorofíceas y Feofíceas marinas bénticas de nuestro país.

Debemos mencionar el importante trabajo realizado por Etcheverry
(1958) el que hace una recopilación minuciosa de toda la literatura algológica
referente a algas chilenas del ambiente marino, sustancialmente Feófitas, Ro-
dófitas y Clorófitas.

La primera Cianófita citada para Chile fue Anabaena chilensis por
Montagne, colectada por Gay (1845) en las aguas termales del Toro (Prov.
Coquimbo).

Al hacer una revisión de la literatura sobre algas chilenas, nos encontra-
mos que referente al grupo de las Cianófitas, los estudios que existen son muy
pocos y han sido efectuados principalmente por autores extranjeros, inte-
grantes de expediciones o que han trabajado durante un tiempo en nuestro
país.

Así tenemos a Hariot (1889) quien como participante de la Misión Cien-
tífica Francesa al Cabo de Hornos (1882-1883), recolectó y estudió material
algológico, el cual fue posteriormente publicado en el tomo V, Botanique,
Mission Scientifique du Cap Horn (pp. 1-140). Cita un total de 11 especies de
Cianófitas encontradas en el extremo sur de Chile, 6 marinas y 5 de agua
dulce.

Posteriormente este mismo ficólogo francés publica dos trabajos (1891,
1892) en los cuales se refiere sólo en parte a la flora cianofítica chilena.

A continuación habría que mencionar a Borge (1901) el cual en un viaje
comandado por Nordensklód al sur de la Patagonia, colectó y estudió 28 cia-
nófitas, todas correspondientes a ambientes dulceacuícolas.

Es el ficólogo alemán Schwabe (1936 a, 1936 b) el primero en estudiar en
forma exclusiva el grupo de las Cianófitas. Durante su estadía en nuestro
país realizó viajes por el centro y sur de Chile, en los cuales colectó y estudió
material algológico cianofítico de cuerpos de agua dulce, especialmente de
aguas termales. En la actualidad, Schwabe se refiere sólo ocasionalmente a
las Cianófitas chilenas, en lo que respecta a especies que él mantiene en cul.
tivo en Alemania.

Otros autores extranjeros que se refieren al grupo, pero secundariamente,
son Kylin y Skottsberg (1919) y Levring (1960) al estudiar las algas marinas
superiores de nuestra costa.

El año 1953 marca una fecha importante para la ficología nacional,
ya que es el comienzo de la expedición sueca a los lagos del sur, integrada

HE -

por quien ha contribuido en mayor grado al conocimiento de las algas de
agua dulce en Chile, el Dr. K. Thomasson, en cuyas publicaciones (1955, 1963)
cita un gran número de especies de Cianófitas,

Finalmente tenemos el trabajo de Forest y Weston (1966) los cuales
citan 2 especies de algas azul-verdes colectadas en el Desierto de Atacama,
siendo éste el único registro que se tiene de ellas en dicho lugar.

Ahora bien, en lo que respecta a trabajos efectuados por investigadores
chilenos, tenemos primeramente a Espinosa (1923), el cual da una lista de 6
especies de Cianófitas dulceacuícolas, 5 de la Prov. de Santiago y 1 de Puerto
Montt. Luego Licuime (1963) que estudió las algas verde-azules de la Prov.
de Santiago.

A continuación tendríamos a Santelices (1966) y Alveal (1970) quienes
en sus estudios efectuados sobre algas superiores en la costa del norte y centro
de Chile, citan una sola especie de Cianófita.

Posteriormente Navarro y Avaria (1971) al estudiar el fitoplancton del
Lago Peñuelas en la Prov. de Valparaíso, citan 4 especies de algas azul-verdes.

Finalmente, en estos últimos años, 1973, 1974 y 1975, han aparecido los
últimos trabajos efectuados sobre Ciamófitas y que corresponden en su tota-
lidad a contribuciones nuestras. De éstos, habría que mencionar principal-
mente: 1) Fitoplancton del Estero Lenga; 2) Estudio cualitativo del fitoplancton
de Laguna Verde; y 3) Cianófitas marinas de Chile, todos efectuados en la
Prov. de Concepción. Los dos primeros corresponden a cuerpos de agua dulce.

Hemos tratado de recopilar en la mejor forma posible toda la informa-
ción referente a este grupo de algas y si ha habido alguna omisión damos
desde ya las excusas anticipadas.

A continuación entregamos una lista de la literatura que consideramos
imprescindible para efectuar un estudio serio a nivel taxonómico y ecológico
del grupo.

1.—OBRAS DE SISTEMATICA.

BORNET, E. et FLAHAULT, C., Révision des Nostocacées heterocystes. 1886-
1888. Ann. Sc. Nat. Sér. 7, Bot. 3, 4, 5, 7 (Reedición Cramer, 1959).
GOMONT, M., Monographie des Oscillariées. Ann. Sc. Nat. Sér. 7, Bot. 15-

16-1892 (Reedición Cramer, 1962).

Estas dos obras dadas anteriormente se consideran la partida oficial de la
Sistemática de las algas azul-verdes.
FORTI, A. Myxophyceae in J.B. de Toni, Sylloge algarum, 5, 1907.
LEMMERMANN, E., Kryptogamenflora der Mark Brandenburg, 3, Algen, 1,

Leipzig, 1910.

TILDEN, J., Minnesota Algae. The Myxophyceae of North America, Minnea-
polis, 1910.

FREMY, P., Les Myxophycées de l'Afrique équatoriale francaise. Arch. de
Bot. 3, 1929-30.

Les Cyanophycées des Cótes d'Europe, Mem. Soc. Nat. Sc. Nat. Math.
Cherbourg, 51, 1934.

Les Scytonematacées de la France. Rev. Alg. 2,3, 1925, 1928.

Les Stigonemacées de la France. Revue Algol. 5, 1930.

Les Rivulariacées de la Normandie. Not. Mém. Doc. Soc. Agr. Arch. Hist.
Nat. Dépt. Manche, 39, 1927.

Les Nostocacées de la Normandie, d9-41, 1929.

Les Vaginariées de la Normandie. Not. Mém. Doc. Soc. Agr. Arch. Hist.
Nat. Dept. Manche, 43, 1931.

Imitiation á P'etude des Cyanophycées, Bull. Soc. Franc. Microsc., 3, 3,
1934.

Les Lyngbyées de la Normandie. Soc. Agr. Hist. Nat. Dept. Manche, 47,
1935.

GEITLER, L., Cyanophyceae in Siisswasserflora Deutschl., 12, 1925.

S ” Cyanophyceae in Rabenhorst's Kryptogamen-flora, 14, 1930-
1932.

y ” et RUTTNER, F., Die Cyanophyceen der Deutschen limno-
logischen Sunda-expedition. Arch. f. Hydrol. suppl. 14, 1935.

si Schizophyceen in Handb. Pflanzenanatomie, 6, 1, 1960.

DESIKACHARY, T.V., Cyanophyta, Ind. Council Agr. Res. New-Dehli, 1959.

UMEZAKI, L, The marine Bluegreen algae wf Japon. Mem. Coll. Agr. Kyoto
Univ., 83, 1961.

ELENKIN, A.A., Monographia algarum cyanophycearum aquidulcium et te
rrestrium in finibus U.R.S.S. inventarum. 1936-1938-1949. Moskwa, Lenin-
grado. (En ruso, 3 vol.).

STARMACH, K., Cyanophyta-Sinice, Glaucophyta-Glaukofity. Flora Slokow.
Polski, 2, Polsk. Ak. Inst. Bot. 1966. (En polaco).

DROUET, F. et DAILY, W.A., Revision of the coccoid Myxophyceae. Butler
Univ. Bot. Stud., 12, 1956.

DROUET, F., Revision of the classification of Oscillatoriacées. Acad. Nat. Sc.
Nat. Philadelphia, Monogr., 15, 1968.

BOURRELLY, P., Les Algues D'Eau Douce III. Les Algues bleues et rouges,
Paris. 1970.

2.—OBRAS ECOLOGICAS Y SISTEMATICAS.

HUBER-PESTALOZZI, G., Das Phytoplankton des Siisswassers, I. Die Bin-
nengewasser, 16, 1938.

KOMAREK, J., Die taxonomische Revision der planktischen Blaualgen der
Tschechoslovaki. Algol. Stud. Prague, 1958.

GOLUBIC, S., Algenvegetation der Felsen. Binnengewasser, 23, 1967.

COCKE, E.C., The Myxophyceae of N. Carolina, 1967, Wiston-Salem.

KANN, E., Oekologische Untersuchungen an Litoralalgen ostholsteinischer
Seen. Arch. f. Hydrob. 37, 1940.

KOL, E., Kryobiologie. Die Binnengewasser, 24, 1968.

VOUK, V., Grundriss zu einer Balneobiologie der Thermen, Basel, 1950.

COPELAND, J.J., Yellowstone thermal Myxophyceae. Ann. New-York Acad.
Sc. 36, 1936.

ANAGNOSTIDIS, K., Untersuchungen ueber die Cyanophyceen einiger Ther-
men in Griechenland. Inst. Syst. Bot. Univ. Thessaloniki, 1961.

CAMERON R.E., Algae of Southern Arizona. I. Rev. Algol. N.S. 6, 1963.

SCHWABE, G.H., Sobre Biotopos termales en el Sur de Chile. Bol. Soc. Biol.
Conc. (Chile), 10, 2, 1936.
% ” ” Aus Boeden von El Salvador Kultivierte Blaualgen, Nova
Hedwigia, 4(3-4), 1962.

GONZALEZ, M. y PARRA, O., Cianófitas marinas de Chile 1. Cianófitas del
ambiente intermareal de la Bahía de Concepción. Gayana, Bot. 31, 1975.

Los géneros de Cyanophyta que han sido citados para Chile suman 41
con un total de 177 taxa, que se reparten de la siguiente manera:

N? taxa
Anabaena 12
Aphanocapsa 5
Aphanothece e
Calothrix 6
Chamaesiphon 2
Chlorogloea 1
Chrooaoccus dl
Chroococcopsis 1
Cylindrospermum 7
Coelosphaerium 3
Dermocarpa 3
Enthophysalis 1

Gomphosphaeria
Gloeocapsa
Hapalosiphon
Hydrocoryne
Hyella
Leptochaete
Kyrtuthrix
Lyngbya
Mastigocladus
Merismopedia
Microcoleus
Microcystis
Nodularia
Nematoradaisia
Nostoc

n= >= o CO +2 09 mu 00 ollo po po mf OO 10

OY —
| No)

Oscillatoria

—

A A E |

Phormidium
Plectonema
Pleurocapsa
Pseudanabaena
Rivularia
Schizothrix
Scytonema
Sirocoleus

pl
o

Spirulina
Stigonema
Symploca
Tolypothrix

o NN

Xenococcus

El ordenamiento de los taxa está basado en la obra de Geitler (1932).
Los nombres específicos están ordenados alfabéticamente en cada género y la
distribución geográfica en sentido de norte a sur. Las referencias biblio-
gráficas corresponden a las más importantes y en donde el investigador en-
contrará la diagnosis, dibujo y claves del taxon requerido,

OTAN OPETYITIA
CYANOPHYCEAE

CHROOCOCCALES

CHROOCOCCACEAE

Microcystis Kuetzing, Linnaea 8, p. 372, 1833

Microcystis aeruginosa Kuetz., Tabulae phycol. 1, p. 6, Lám. 8, 1845-49.
Smith (1920), p. 39, Figs. 2-3; Seckt (1924), p. 97; Geitler in Pascher (1925),
p. 58, Figs. 37 y 40; Prescott (1931), p. 29; Smith (1931), p. 182; Geitler in
Rabenh. (1932), p. 137, Fig. 59 d; West et Fritsch (1932), p. 466, Fig. 189 D;
Frémy (1933 a), p. 10, Lám. 1, Fig. 6; Seckt (1935), p. 53; Drouet (1938), p. 288;
Huber-Pestalozii in Thienemann (1938), p. 132, Fig. 4; Drouet et Daily (1939),
p. 79; Prescott (1951), p. 456, Lám. 102, Figs. 1-4; Fott (1971), p. 41, Fig. 72 a.
Citas para Chile.— Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971,
p. 301, Lám. 5, Figs. 8-9); Prov. Arauco, Lago Lanalhue (Thomasson, 1963,
p. 72); Prov. Magallanes, Monte Chico, Laguna Luisa (como Clathrocystis
aeruginosa, Borge 1901, p. 31).

Microcystis bothrys Teiling, Bot. Not., p. 63, 1942.
Cita para Chile.— Prov. Cautín, Lago Pichilafquén (Thomasson 1963, p. 56).

Microcystis enteromorpha Schwabe, Verh. Deutschen Wiss. Vereins Santiago,
3, p. 115, Fig. 1, 1936.

Cita para Chile.— Prov. Valdivia, Termas de Puyehue (Schwabe, loc. cit.).

Microcystis flos-aquae (Wittr.) Kirchn. in Engler und Prantl, Nat. Pflanzen-
fam. I, la, p. 56, 1900.
Forti in De Toni (1907), p. 86; Tilden (1910), p. 35, Lám. 2, Fig. 18; Smith
(1920), p. 39, Lám. 5, Fig. 1; Geitler in Pascher (1925), p. 60, Fig. 41-42;
Geitler in Rabenh. (1932), p. 138, Figs. 59e, £
Cita para Chile.— Prov. Concepción, Estero Lenga (Parra y González in Rivera
et al., 1973, p. 49, Lám. 8, Fig. 4).

Microcystis litoralis (Hansg.) Forti in De Toni, Syll. Algarum, 5, p. 89, 1907.
Geitler in Rabenh. (1932), p. 143; Frémy (1933 a), p. 11; Ardré (1969), p. 144.
Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
1975, p. 11, Fig. 6).

<is

Microcystis marginata (Menegh.) Kuetz., Tabulae phycol, 1, lám. 8, 1845-49.
Forti in De Toni (1907), p. 91; Tilden (1910), p. 34, Lám. 2, Fig. 17; Carlson
(1921), p. 6, Fig. 1: Geitler in Pascher (1925), p. 58, Fig. 39; Prescott (1931),
p. 29; Geitler in Rabenh (1932), p. 136, Figs. 59 a-c; West et Fritsch (1932),
p. 462, Fig. 186 A; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 132, Fig
Cita para Chile.— Prov. Santiago (Licuime, 1963, p. 50, lám. A-6).

Aphanocapsa Naegeli, Gatt. einzell. Algen, p. 51,
Lám. 1 B, 1849

Aphanocapsa delicatissima West et West, Period. phytoplanct. Brit. lakes,
Journ. Linn. Soc. 40, p. 431, Lám. 19, Figs. 2-3, 1912.

Smith (1920), p. 41, Lám. 2, Fig. 7; Geitler in Pascher (1925), p. 65, Fig. 54a,
b; Prescott (1931), p. 24, Lám. 1, Fig. 1; Geitler in Rabenh. (1932), p. 157,
Figs. 69 c-d; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 138, Fig. 11; Guarrera
et al (1968), p. 287, Lám. 11, Fig. 2.

Citas para Chile.— Prov. de Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-9);
Prov. Cautín, Lago Villarrica (Thomasson, 1963, p. 45); Prov. de Valdivia,
Lago Panguipulli (Thomasson, 1955, p. 495).

Aphanocapsa elachista West et West, Algae West Indian, Journ. Lin. Soc. 30,
p. 276, Lám. 15, Figs. 9-10, 1894.

Forti in De Toni (1907), p. 73; Tilden (1910), p. 28, Lám. 2, Fig. 6; Geitler
in Pascher (1925), p. 65, Fig. 55; Taylor (1928), p. 85; Prescott (1931), p. 24,
Lám. 1, Fig. 2; Geitler in Rabenh. (1932), p. 156, Fig. 69 b; Huber-Pestalozzi
in Thienemann (1938), p. 138, Fig. 7.

Cita para Chile.— Prov. Valdivia, Lago Pellaifa (Phomasson, 1963, p. 103).

Aphanocapsa elachista var. planctonica G.M. Smith, Phytoplanct. Island lakes
Wisc. Lp. 42, Lam 3, Fig: 3, 1920.

Geitler in Pascher (1925), p. 65; Prescott (1931), p. 24; Geitler in Rabenh.
(1932), p. 157; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 138, Fig. 9; Bou-
rrelly et Manguin (1952), p. 141, Lám. 12, Fig. 1; Skuja (1964), p. 26, Lám. 2,
Citas para Chile.— Prov. de Concepción, Laguna Chica de San Pedro (Tho-
masson, 1963, p. 71); Prov. de Cautín, Lago Villarrica (Thomasson, 1963, p. 45);
Prov. de Llanquihue, Lago “Todos los Santos (Thomasson, 1963, p. 65).

Aphanocapsa grevillei (Hass.) Rabenh., Fl. Eur. Algarum, 2, p. 50, 1865.

Forti in De Toni (1907), p. 73; Tilden (1910), p. 28, Lám. 2, Fig. 7; Seckt
(1922), p. 81; Geitler in Pascher (1925), p. 65, Fig. 57; Taylor (1928), p. 85;

IS

Prescott (1931), p. 24; Geitler in Raben. (1932), p. 159, Fig. 71; West et Fritsch
(1932), p. 463, Fig. 187 A; Martínez Bustos (1934), p. 19; Tilden (1937), p. 55,
Fig. 2 A; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 139, Fig. 14; Skuja (1964),
p. 27; Guarrera et al. (1968), p. 286, Lám. 10, Fig. 4.

Citas para Chile.— Prov. de Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-10»;
Prov. de Cautín, en pozas cerca del Lago Villarrica (Phomasson, 1963, p. 101).

Aphanocapsa muscicola (Menegh.) Wille, Alg. Not., Nyt. mag. naturvid., p. 39,
Lám. 2, Figs. 19-23, 1919.

Geitler in Pascher (1925), p. 66, Fig. 52; Geitler in Rabenh. (1932), p. 160;

como A. virescens (Hass.) Rabenh.

Cita para Chile.— Prov. de Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-11).

Aphanothece Naegeli, Gatt. einzell. Algen, p. 59, 60, 1849

Aphanothece nidulans P. Richt., Bot. Not., p. 128, 1884.

Smith (1920), p. 44, lám. 6, Fig. 1; Geitler in Pascher (1925), p. 71, Fig. 64;
Geitler in Rabenh (1932), p. 168, Fig. 75 c; Huber-Pestalozii in Thienemann
(1938), p. 142, Fig. 19; Hortobagyi (1969), p. 26, Lám. 1, Fig. 3.

Cita para Chile.— Prov. de Llanquihue. Lago Todos los Santos (Thomasson,
1963, p. 65).

Aphanothece saxicola Naeg., Gatt. einzell. Algen, p. 60, 1849.

Forti in De Toni (1907), p. 81; Tilden (1910), p. 30; Fritsch (1911-1912), p. 332;
Geitler in Pascher (1925), p. 70; Taylor (1928), p. 86; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 169; Prescott (1951), p. 468, Lám. 104, Fig. 1; Bourrelly et Manguin (1952),
p. 132.

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Baño Candelaria, Río Puelo (Schwabe,
1936 a, p. 111).

Gloeocapsa Kuetzing, Phycol. gen., p. 174, 1843

Gloeocapsa alpina (Naeg.) emend. Brand, Der Formenkreis von Gloeoc, alp.,
Bot. Centralbl., 53, 1900.

Geitler in Pascher (1925), p. 92, Fig. 98; West et Fritsch (1927), p. 462; Geitler
in Rabenh. (1932), p. 206, Figs. 98-100.
Cita para Chile. Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 31).

Gloeocapsa crepidinum Thur., Notes Algol., p. 1, Lám. 1, Figs. 1-3, 1876.

Farlow (1881), p. 27, Lám. 1, Fig. 1; Forti in De Toni (1907), p. 44; Tilden
(1910), p. 20, Lám. 1, Fig. 28; Geitler in Pascher (1925), p. 89, Fig. 95; Newton
(1931), p. 4, Fig. 3; Geitler in Rabenh. (1932), p. 190, Figs. 85-86.

==

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Isla Gordon (Hariot,
1889, p. 10).

Gloeocapsa sanguinea (Ag.) Kuetz., Phycol. gen., p. 174, 1843.

Forti in De “Poni (1907), p. 36; Tilden (1910), p. 23; Geitler in Pascher (1925),
p. 91, Fig. 94; West et Fritsch (1927), p. 462; Geitler in Rabenh. (1932), p. 202,
RiOtas

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Río Peulla en rocas en la Cascada de
Los Novios (Thomasson 1963, p. 40).

Chroococcus Naegeli, Gatt. einzell. Algen, p. 45, 1849

Chroococcus caldariorum Hansg., Prodr. Alg. Fl. Bóhmen 2, p. 159, Fig. 58a,
1892,

Geitler in Pascher (1925), p. 82; Geitler in Rabenh. (1932), p. 238, Fig. 116 d.

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, “Termas de Llancahué (Schwabe, 1936 a,
p. 116, Fig; 12).

Chroococcus cohaerens (Bréb.) Naeg., Gatt. einzell. Algen, p. 46, 1849,

Forti in De Toni (1907), p. 23; Tilden (1910), p. 9; Geitler in Pascher (1925),
p. 81; Taylor (1928), p. 86; Geitler in Rabenh. (1932), p. 238, Fig. 116; Mar-
tínez Bustos (1934), p. 20.

Cita para Chile.— Prov. Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-2).

Chroococcus consacialus Hariot, Notarisia 7(31), p. 1427, 1892.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Isla Grande (Hariot,
loc, cit.).

Chroococcus minor (Kuetz.) Naeg., Gatt. einzell. Algen, p. 47, lám. la, Fig. 4,
1849.
Forti in De Toni (1907), p. 23; Tilden (1910), p. 9, Lám. 1, Fig. 7; Carlson
(1921), ..p..,5; ¡Geitler in Pascher (1925), p./81, Eig;: 79; Prescott” AUIMaES
Lám. 1, Fig. 8; Geitler in Rabenh (1932), p. 240, Fig. 116 g; Prescott (1951),
p- 449, Lám. 100, Fig. 12.
Cita para Chile.— Prov. de Concepción, Bahía de Concepción (González y
Larra, 1975. p. 9 Faga2).

Chroococcus minutus (Kuetz.) Naeg., Gatt, einzell, Algen, p. 46, 1849,

Forti in De Toni (1907), p. 11; Tilden (1910), p. 7, Lám. 1, Fig. 5; Smith (1920),
p- 28, Lám. 1, Fig. 1; Carlson (1921), p. 5; Seckt (1922), p. 388, Fig. 1; Seckt
(1924), p. 81; Geitler in Pascher (1925), p. 79, Fig. 74; Taylor; (1928), p.87;

10%

Smith (1931), p. 181; Geitler in Rabenh. (1932), p. 232, Figs. 1l2a y 113c;
Frémy (1933 a), p. 24, Lám. 4, Fig. 6; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938),
p. 147, Fig. 30; Prescott (1951), p. 449, Lám. 100, Fig. 9; Bourrelly et Manguin
(1952), p. 142; Sampaio (1962), p. 17.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-3);
Prov. de Concepción, San Vicente (Schwabe, 1936 b, p. 116); Prov. de Valdivia,
Lago Puyehue (Schwabe, 1936 b, p. 116); Prov. de Llanquihue, Lago Todos
los Santos (Thomasson, 1963, p. 65, Fig. 40.7).

Chroococcus turgidus (Kuetz.) Naeg., Gatt. einzell. Algen, p. 46, 1849.

Farlow (1881), p. 27; Setchell et Gardner (1903), p. 179; Forti in De Toni
(1907), p. 11; Tilden (1910), p. 5, Lám. 1, Fig. 3; Gain (1911), p. 372; Setchell
et Gardner (1919), p. 10; Smith (1920), p. 31, Lám. 1, Fig. 9; Seckt (1922),
p. 389, Fig. 3; Seckt (1924), p. 81; Geitler in Pascher (1925), p. 77, Fig. 71;
Taylor (1928), p. 84; Newton (1931), p. 3, Fig. 1; Smith (1931), p. 181; Pres-
cott 1931), p. 26, Lám. 1, Fig. 10; Geitler in Rabenh. (1932), p. 228, Fig. 109 b
y 110; Frémy (1933 a), p. 24, Lám. 4, Fig. 5; Huber-Pestalozzi in Thienemann
(1938), p. 147, Lám. 10, Fig. 25; Smith (1950), p. 554, Fig. 453; Bourrelly et
Manguin (1952), p. 142; Sampaio (1959), p. 8, Lám. 4, Figs. 1-6; Levring (1960),
p. 26; Sampaio (1962), p. 14, Lám. 1, Fig. 2; Guarrera et al. (1968), p. 283,
lám. 9, Fig. 39; Hortobagyi (1969), p. 27, Fig. 5; Fott (1971), p. 41, Fig. 7.4.
Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-1);
Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra, 1975, p. 10,
Fig. 3); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue (Thomasson, 1963, p. 63);
Lago Todos los Santos (Thomasson, 1963, p. 66); Prov. Chiloé, Golfo de
Ancud (Levring, 1960, p. 26).

Gomphosphaeria Kuetzing, Alg. Exsicc. Dec. 16, NO 151, 1836

Gomphosphaeria aponina Kuetz., loc. cit.

Nordstedt (1882), p. 185; Wille (1883), p. 44; Borge (1901), p. 33; Setchell
et Gardner (1903), p. 180; Borge (1906), p. 11; Forti in De Toni (1907), p. 97;
Tilden (1910), p. 38, lám. 2, Figs. 23-28; Fritsch (1911-1912), p. 333; Smith
(1920), p. 37, Lám. 4, Figs. 2-3; Geitler in Pascher (1925), p. 98, Figs. 108,
109, 112, 113; Geitler in Rabenh. (1932), p. 245, Figs. 117 a-c, 118 b; West et
Fritsch (1927), p. 460, Fig. 185 B; Taylor (1928), p. 89; Prescott (1931), p. 27;
Smith (1931), p. 182; Frémy (1933 a), p. 22, Lám. 4, Fig. 2; Tilden (1937),
p. 55, Fig. 2D; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 151, Fig. 39;
Smith (1950), p. 564, Fig. 472 A; Geitler (1960), p. 46; Sampaio (1962), p. 13,
Lám. 1, Fig. 1; Acleto (1966), p. 15, Lám. 2, Fig. 13.

HB

Citas para Chile.— Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971,
p. 302, Lám. 6, Fig. 3); Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos (Thomasson,
1963, p. 66); Prov. Magallanes, Magallanes (Borge, 1901, p- 33).

Gomphosphaeria lacustris Chodat, Etud. biol. lac., Bull. Herb. Boissier, 6.
p. 180, Fig. 1, 1898.

West (1908), p. 31; Smith (1920), p. 36, Lám. 4, Fig. 5; Geitler in Pascher
(1925), p. 98, Figs. 110, 114; West et Fritsch (1927), p. 466, Fig. 189 E; Prescott
(1931), p. 27; Geitler in. Rabenh.. (1952), p. 243, Figs. 117 d, e, 118 2 ABrémy
(1933 a), p. 21, Lám. 4, Fig. 1; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 151,
Fig. 38; Smith (1950), p. 564, Fig. 472 B; Komarek in Komarek et Ettl (1958),
p. 85, Lám. 8, Fig. 10; Lám. 9, Fig. 1; Hortobagyi (1969), p. 27; Fott (1971),
p. 42, Fig. 8.3.

Citas para Chile.— Prov. Concepción, Laguna Chica San Pedro (Thomasson,
1963, p. 71); Prov. Cautín, Lago Villarrica (Thomasson, 1963, p. 66); Prov.
Valdivia, Lago Panguipulli (Fhomasson, 1955, p. 206); Prov. Llanquihue, Lago
Todos los Santos (Thomasson, 1963, p. 66).

Coelosphaerium Naegeli, Gatt. einzell. Algen, p. 54, Lám. 1, 1849

Coelosphaerium naegelianum Ung., Beitr. Kenntn. nied. Alg. Form. Denkschr.
Akad. Wiss., p. 7, 1854.

Geitler in Pascher (1925), p. 101, Fig. 115; Prescott (1931), p. 26, Lám. 1,

Fig. 13; Smith (1931), p. 181; Geitler in Rabenh. (1932), p. 249, Figs. 121 a,

b, e; 122b, c; Tilden (1937), p. 55, Fig. 2C; Smith (1950), p. 563, Fig. 470 B;

Prescott (1951), p. 470, Lám. 106, Fig. 4.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Laguna de los Morros (Borge, 1901, p. 31).

Coelosphaerium goetzei Schmidle, Trop. Afrik. Thermalag., Engl. Bot. Jahrb.,
30, p. 241, Lám. b Fig. 3, 1901:

Geitler in Pascher (1925), p. 102; Geitler in Rabenh. (1932), p. 254.

Cita para Chile.— Prov. Valdivia, Lago Riñihue (Thomasson, 1955, p. 202).

Coeslophaerium kuetzingianum Naeg., Gatt. einzell. Alg., p. 54, Eám. 1C, 1849,
Geitler in Pascher (1925), p. 102; West et Fritsch (1927), p. 461; Geitler in
Rabenh. (1932), p. 253, Fig. 121 c. d.

Citas para Chile.— Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, en pozas (Thomasson 1963,
p. 103); Prov. Llanquihue, Lago Todos Los Santos, plancton (Thomasson 1963,
p. 66); Prov. Magallanes, Lagunas II y III (Asprey, et. al. 1964, p. 19).

— ==

Merismopedia Meyen in Wiegmann, Arch. Naturgesch. 2,
p. 67, 1839

Merismopedia glauca (Ehrenb.) Naeg., Gatt. einzell. Algen, 55, lám. 1 d, Fig. 1,
1849.

Borge (1906), p. 11; Forti in De Toni (1907, p. 105; West (1908), p. 36; Tilden
(1910), p. 43, Lám. 2, Fig. 35; Seckt (1924), p. 81; Vallentin (1924), p. 284;
Geitler in Pascher (1925), p. 106, Fig. 125; West et Fritsch (1927), p. 459,
Fig. 184 B; Frémy (1928), p. 381, Fig. 1; Prescott (1931), p. 28; Newton (1931),
p. 28, Fig. 7; Geitler in Rabenh. (1932), p. 264, Fig. 129 d; Martínez Bustos
(1932), p. 21; West et Fritsch (1932), p. 459, Fig. 184 B; Frémy (1933 a), p. 7,
Lám. 1, Fig. 2; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 160, Fig. 50; Prescott
(1951), p. 459, Lám. 101, Figs. 2-4; Bourrelly et Manguin (1952), p. 144; Gei-
tler (1960), p. 49, Fig. 38; Guarrera et al. (1968), p. 289, Lám. 12, Fig. 6;
Hortobagyi (1969), p. 27, Fig. 16.

Citas para Chile.— Prov. Valparaíso, Viña del Mar (Schwabe, 1936 b, p. 118,
Fig. 4); Lago Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971, p. 302, Lám. 3, Fig. 6); Prov.
Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-5; Prov. Concepción, Bahía
de Concepción (González y Parra, 1975, p. 11, Figs. 4 y 5, Prov. Arauco, Lago
Lanalhue (Thomasson, 1963, p. 72); Prov. Cautín, Lago Villarrica (Phomasson,
1963, p. 45); Prov. Valdivia, Lago Riñihue (Thomasson, 1955, p. 202); Lago
Pellaifa (Thomasson, 1963, p. 66); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue (Tho-
masson, 1963, p. 66); Lago Todos los Santos (Thomasson, 1963, p. 66); Prov.
Magallanes, Magallanes (Borge, 1901, p. 31); Lago Fagnano y Lago Roca (Tho-
masson, 1955, p. 195 y 198).

Merismopedia punctata Meyen in Wiegm., Arch. Naturgesch. 2, p. 67, 1839.
Kirchner in Engler und Prantl (1900), p. 56, Fig. 50b; Smith (1920), p. 33,
Lám. 2, Fig. 3; Geitler in Pascher (1925), p. 106, Fig. 124; Taylor (1928), p. 88;
Prescott (1931), p. 28; Smith (1931), p. 182; Geitler in Rabenh. (1932), p. 263,
Fig. 129 c; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 160, Fig. 158; González
Guerrero (1950), p. 45, Lám. 1, Fig. 8; Smith (1950), p. 562, Fig. 468 B; Pres-
cott (1951), p. 459, Lám. 102, Fig. 10; Bourrelly et Manguin (1952), p. 145;
Hortobagyi (1968), p. 154, Fig. 14.

Citas para Chile.— Prov. Magallanes, Lago Fagnano y Lago Roca (Thomasson,
1995, p. 195 y 198).

Merismopedia tenuissima Lemm., Beitr. Kennth. Plankton-alg., Bot. Centralbl.
76;, p.. 154,, 1898.

Forti in De Toni (1907), p. 108; Tilden (1910), p. 45, Lám. 2, Fig. 37; Fritsch
(1911-1912), p. 333; Smith (1920), p. 33, Lám. 2, Fig. 2; Seckt (1924), p. 55;

a A

Geitler in Pascher (1925), p. 106, Fig. 123; Prescott (1931), p. 28; Geitler in
Rabenh. (1932), p. 263, Fig. 129 a, b; González Guerrero (1941), p. 142, Fig. L,
6; Prescott (1951), p. 459, Lám. 100, Fig. 17; Bourrelly et Manguin (1952),
p- 145; Komarek in Komarek et Ettl (1958), p. 43, Lám. 4, Figs. 2-4; Hortobagyi
(1968), p. 155, Figs. 15-16.

ENTOPHYSALIDACEAE

Entophysalis Kuetzing, Phycol. gen., p. 177, 1843

Entophysalis granulosa Kuetz., Phycol. gen., p. 177, Lám. 18, Fig. 5, 1843.
Forti in De Toni (1907), p. 58; Tilden (1910), p. 24, Lám. 1, Fig. 33; Fritsch
(1911-1912), p. 332; Geitler in Rabenh. (1932), p. 298, Fig. 146; Frémy (1933 a),
p. 32, Lám. 6, Fig. 5; Feldmann (1937), p. 10; Feldmann (1958), p. 28.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
1975, p. 12,1 Figs. 7-11).

Chlorogloea Wille, Algolog. Nat. 1-b, Nyt. Mag. naturv. 38,
po Lar 1,1900

Chlorogloea microcystoides Geitler, Neue Cyan. Gruppe Cham., Arch. f. Protk.
ML Pus tU 102

Geitler in Pascher (1925), p. 122, Fig. 158; Geitler in Rabenh. (1932), p. 30,

Fig. 155.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime 1963, p. 50, Lám. A-12).

CHAMAESIPHONALES

PLEUROCAPSACEAE

Chroococcopsis Geitler, Arch. Protistenk. 51, p. 342,
Fig. K, 1925

Chroococcopsis gigantea Geitler, loc. cit.

Geitler in Rabenh. (1932), p. 323, Fig. 158; Martínez Bustos (1934), p. 21.
Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
1975;p. 13, Fig" 12):

10

Xenococcus Thuret in Bornet et Thuret, Notes Algol.
2, p. 73-75, 1880

Xenococcus pyriformis S. et G. in Gardner, Univ. Calif. Publ. Bot., 3, p. 463,
Lám. 39, Fig. 12, 1918.

Setchell et Gardner (1919), p. 34, Lám. 5, Fig. 12; Geitler in Rabenh. (1932),

p. 336, Fig. 172.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,

1975, p. 15, Figs. 19-21).

Nematoradaisia Geitler, Sinopt. Darst. Cyan., Beih. Bot.
Centralbl. 41(2), p. 242, 1925

Nematoradaisia laminariae (S. et G.) Geitler, loc. cit.

Setchell et Gardner (1919), p. 46, Lám. 3, Fig. 14-16; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 342, Fig. 180.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
1975, p. 13, Figs. 16-18).

Pleurocapsa Thuret in Hauck, Meersalg. Deutschl. Oest, in
Rabenhorst Kryptogamen-fl. D. Oest. Schw., 2 p. 515, 1885

Pleurocapsa fuliginosa Hauck in Rabenhorst's Kryptogamen-fl. 2, p. 515,
Fig. 231, 1885.
Setchell et Gardner (1903), p. 181; Forti in De Toni (1907), p. 122; Tilden
(1910), p. 48, Lám. 3, Figs. 2-3; Setchell et Gardner (1919), p. 36; Newton
(1931), p. 3, Fig. 9; Geitler in Rabenh. (1932), p. 357, Fig. 189; Frémy (1933 a),
p. 37, Lám. 8, Figs. 1-2.
Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
1975, p. 14, Figs. 13-15).

Hyella Bornet et Flahault, Deux nouv. genr. d'Alg.
perf., J. Bot. (Morot), 2, p. 163, 1888

Hyella caespitosa Bornet et Flahault, loc. cit.

Forti in De Toni (1907), p. 125; Tilden (1910), p. 51, Lám. 3, Figs. 9-11;
Newton (1931), p. 13, Fig. 11; Geitler in Rabenh. (1932), p. 369, Fig. 198;
Frémy (1933 a), p. 49, Lám. 12, Figs. 4-10; Frémy (1936), p. 294; Feldmann
(1937), p. 12; Frémy (1938), p. 9.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
1975, p. 16, Figs. 22 y 23); Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Isla Grande
(Hariot, 1892, p. 1428).

ire

DERMOCARPACEAE

Dermocarpa Crouan, Ann. Sc. Nat, Bot., ser. 4, 9, p. 70, 1858

Dermocarpa prasina (Reinsch) Born. et Thur., Notes Algol., 2, p. 73, Lám. 26,
Figs. 6-9, 1880.

Setchell et Gardner (1903), p. 182; Forti in De Toni (1907), p. 128; Tilden
(1910), p. 52, Lám. 3, Figs. 13-15; Newton (1931), p. 10; Geitler in Rabenh.
(1932), p. 394, Fig. 219; Frémy (1933 a), p. 58, Lám. 16, Fig. 3; Ardré (1969),
po 150,

Citas para Chile.— Prov. Valparaiso, Montemar (Levring, 1960, p. 26); Prov.
Magallanes, Tierra del Fuego (Kylin) et Skottsberg, 1919, p. 76) y Bahía
Orange e Isla Wollaston (Hariot, 1889, p. 11).

Dermocarpa sphaerica S. et G. in Gardner, Univ. Calif. Publ. Bot., 2, p. 457,
Lám. 39, Fig. 14, 1918,

Setchell et Gardner (1919), p. 24, Lám. 5, Fig. 14; Geitler in Rabenh. (1932),

p. 393, Fig. 217; Frémy (1933 a), p. 58, Lám. 16, Fig. 2; Feldmann (1937), p. 13.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,

1975, p.A16, Eos 2425):

Dermocarpa sphaeroidea S. et G. in Gardner, Univ. Calif. Publ. Bot., 2, p. 440,
Lám. 36, Fig. 7, 1918.

Setchell et Gardner (1919), p. 26, Lám. 2, Fig. 7; Geitler in Rabenh (1932),
p. 39% Fig 02102

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,

1975, p. V'7, Fig" 26):

CHAMAESIPHONACEAE

Chamaesiphon A. Braun et Grunow, Rabenh. Fl. Eur.
Eur. Algarum 2, p. 148, 1865

Chamaesiphon confervicola A. Braum in Rabenh., Fl. Eur. Algarum 2, p. 148,
1865.

Kirchner in Engler et Prantl (1900), p. 60, Fig. 51h; Seckt (1924), p. 81;
Geitler in Pascher (1925), p. 149, Fig. 183; Geitler in Rabenh. (1932), p. 424,
Fig. 423 a; Frémy (1933 a), p. 63, Lám. 17, Fig. 5.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Río Baguales, Río “Tres Pasos, Cerro
Toro, Monte Chico y Laguna Blanca (Borge, 1901, p. 31).

qe.

Chamaesiphon incrustans Grunow, in Rabenh., Fl. Eur. Algarum 2, p. 149,
1865.

Forti in De Toni (1907), p. 136; Tilden (1910), p. 55, Lám. 3, Figs. 29-30;
Geitler in Pascher (1925), p. 153, Fig. 186; West et Fritsch (1927), p. 467,
ETS. 190; Prescott (1931), *p. 29, Ladm. 2, Fig, 7; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 433, Fig. 253; Frémy (1933 a), p. 63, Lám. 17, Fig. 6; Smith (1950), p. 572,
Fig. 484; Prescott (1951), p. 477, Lám. 108, Figs. 7-8.

Cita para Chile. Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-13).

HORMOGONALES

STIGONEMATACEAE

Stigonema Agardh, Syst. Algarum, p. 22, 1824

Stigonema polyceras Ag., Spec. Algarum, p. 319, 1822,
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Cabo de Hornos (Hariot,
1889, p. 13).

Hapalosiphon Naegeli in Kuetzing, Spec. Algarum,
p. 894, 1849

Hapalosiphon fontinalis (Ag.) Born., Bull. Soc. Bot. France, p. 156, 1889.
Forti in De Toni (1907), p. 568; Tilden (1910), p. 239, lám. 14, Fig. 13; Geitler
in Pascher (1925), p. 199, Fig. 237 a; Geitler in Rabenh. (1932), p. 535, Fig. 332.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Bahía Orange (Hariot, 1892, p. 1428).

MASTIGOCLADACEAE

Kyrtuthrix Ercegovic, Arch. Protistenk. 66, p. 170,
Fig: 3, 1929

Kyrtuthrix maculans (Gom.) Umezaki, Mem. Coll. Agric. Kyoto Univ., Special
Number, p. 85, 1958. ,

Umezaki (1961), p. 85, Lám. 14, Fig. 1; Halperin (1970), p. 15, ¿LA 2,

Figs. 1-4; Lám. 8, Figs. 2-8.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,

1975, p. 18, Figs. 27, y 28).

HO =

Mastigocladus Cohn, Alg. Kalsb. Sprudels, Abh. Schles, Ges.
Vaterl. Cult. Abth. Naturwiss., 2, p. 39, 1863

Mastigocladus laminosus Cohn, loc. cit.

Kirchner in Engler und Prantl (1900), p. 82, Fig. 58 F; Geitler in Pascher
(1925), p. 203, Fig. 242; Geitler in Rabenh. (1932), p. 558, Figs. 350 y 352;
Fott(1ITD)p: 487 Pres iac3s

Citas para Chile.— Prov. Valdivia, Termas de Puyehue (Schwabe 1936 a, p. 102
y Schwabe 1936 b, p. 121, Fig. 6); Prov. Osorno, Termas del Lago Rupanco
(Schwabe, 196a y 1936b, pp. 111 y 121); Prov. Llanquihue, Termas de
Llancahué (Schwabe, 1936 a, polea):

RIVULARIACEAE

Leptochaete Borzi, Nuovo Giorn. Bot. Ital., 14, p. 298, 1882

Leptochaete crustacea Borzi, Nuovo Giorn. Bot. Ital., 14, p. 298, Figs. 6-8, 1882,
Geitler in Pascher (1925), p. 208, Fig. 244; Geitler in Rabenh. (1932), p. 570,
Figs 39/

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Punta Arenas, Laguna Blanca (Borge,
1901, p. 29); Prov. Valdivia, Lago Riñihue (Thomasson, 1955, p. 202).

Calothrix Agardh, Syst. Algarum, p. 24, 1824

Calothrix aeruginea (Kuetz.) Thuret, Essai Class. Nost., p. 10, 1875; Bornet
et Thuret, Notes algol. 2, Lám. 37, Fig. 1-6, 1880.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 358; Forti in De Toni (1907), p. 612;
Tilden (1910), p. 261, lám. 17, Fig. 1; Fritsch (1911-1912), p. 334; Newton
(1931), p. 33, Geitler in Rabenh. (1932), p. 599, Fig. 375 a; Frémy (1933 b),
p. 33; Frémy (1933 a), p. 140, Lám. 34, Fig. 1; Feldmann (1958), p. 34; Darley
(1967) 5D. Lg ile

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Tierra del Fuego (Hariot, 1889, p. 13).

Calothrix crustacea Thuret in Bornet et Thuret, Notes algol. 1, p. 13, Lám. 4,
1876.
Bornet et Flahault (1886-1888), p. 359; Forti in De Toni (1907), p. 613; Tilden
(1910), p. 264, Lám. 17, Figs. 2-6; Setchell et Gardner (1919), p. 99; Frémy
(1928), p. 388, Fig. 17; Newton (1931), p. 24, Fig. 23; Geitler in Rabenh. (1932),
p- 601, Fig. 375 b; Frémy (1933 a), p. 146, Lám. 38, Fig. 2; Frémy (1938), p. 35;
Chapman (1956), p. 367, Fig. 12, NO 1; Fan (1956), p. 172, Fig. 5; Feldmann
(1958), p. 34; Umezaki (1961), p. 95; Lám. 17, Fig. 2; Lám. 18, Fig. 1; Halperin

—9)—

(1967), p. 236, Lám. 8, Figs. 1-3; Lám. 14, Figs. 1-4; Darley (1968), p. 167,
lám. 1, Fig. A; Ardré (1969), p. 161; Halperin (1970), p. 79.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
1975, p. 19, Figs. 32-39).

Calothrix epiphitica W. et G.S. West, J. Bot. 35, p. 290, 1897.

Forti in De Toni (1907), p. 621; Tilden (1910), p. 256, Lám. 12, Fig. 7;
Geitler in Pascher (1925), p. 226; Geitler in Rabenh. (1932), p. 606; Seckt
(1935), p. 55; Prescott (1951), p. (593, Lám.:132/Figs. 2-3,

Cita para Chile.— Provincia Magallanes, Punta Arenas, Monte Chico (Borge,
908" p.. 29).

Calothrix fusca Born. et Flah., Rév. Nost. hét. 1, p. 364, 1886-1888.

Forti in De Toni (1907), p. 617; Tilden (1910), p. 265, Lám. 17, Figs. 10-11;
Carlson (1921), p. 9; Geitler in Pascher (1925), p. 221, Fig. 260; Geitler in
Rabenh. (1932), p. 610, Fig. 384; Frémy (1933 a), p. 145, Lám. 36, Fig. 2;
Smith (1933), p. 105, Fig. 64; Prescott (1951), p. 553, Lám. 132, Figs. 4-5.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Punta Arenas (Borge, 1901, p. 29).

Calothrix scopulorum (W. et M.) Ag., Syst. Algarum, p. 70, 1824.

Tilden (1910), p. 258, Figs. 11-12; Setchell et Gardner (1919), p. 96; Newton
(1931), p. 33; Geitler in Rabenh. (1932), p. 600, Fig. 374 £g; Frémy (1933 a),
p. 143, Lám. 35, Fig. 2; Frémy (1938), p. 35; Chapman (1956), p. 366, Fig. 8,
NQ 3; Umezaki (1961), p. 92, Lám. 17, Fig. 1; Darley (1968), p. 163; Ardré
(1969), p. 160.

Citas para Chile.— Prov. Tarapacá, Iquique (Levring, 1960, p. 27); Prov.
Concepción, Bahía Concepción (González y Parra, 1975, p. 19, Figs. 29-31,
Prov. Llanquihue, Estero Reloncaví (Levring, 1960, p. 27).

Calothrix thermalis (Schwabe) Hansg., Oesterr. Bot. Z., 34, p. 279, 1884.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 368; Borge (1906), p. 9; Forti in De Toni
(1907), p. 625; Tilden (1910), p. 268, Lám. 18, Figs. 1-5; Geitler in Pascher
(1925), p. 223, Fig. 264; Geitler in Rabenh. (1932), p. 610.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. C-10).

Rivularia Agardh, Syst. Algarum, p. 19, 1824

Rivularia atra Roth, Cat. Bot. 3, p. 340, 1806.

Farlow (1881), p. 38; Bornet et Flahault (1886-1888), p. 353; Forti in De Toni
(1907), p. 664; Tilden (1910), p. 289, Lám. 20, Fig. 10; Newton (1931), p. 38,
Fig. 26; Geitler in Rabenh. (1932), p. 645, Figs. 410 b-c; Frémy (1933 a), p. 153,

A =É

Lám. 42, Fig. 2; Womersley (1946), p. 132, Fig. 1B; Smith (1950), p. 600,
Fig. 522; Darley (1967), p. 186.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Tierra del Fuego (Hariot, 1889, p. 13).

Rivularia beccariana (De Not.) Born. et Flah., Rév. Nost. hét. 1, p. 356, 1886-
1888.

Geitler in Pascher (1925), p. 239; Geitler in Rabenh. (1932), p. 649.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Punta Arenas (Borge, 1901, p. 29).

Rivularia plicata Carmichel in Hooker, Brit. Fl., 2, p. 392, 1853.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Isla Clarence y Bahía
Hope (Hariot, 1889, p. 130).

SCYTONEMATACEAE

Plectonema Thuret, Essai Class. Nost., p. 375, 1875

Plectonema battersíí Gomont, Bull. Soc. Bot. France, 46, p. 36, 1899.

Forti in De Toni (1907), p. 495; Setchell et Gardner (1919), p. 79, Lám. 1,
Fig. 1; Newton (1931), p. 25, Fig. 18; Geitler in Rabenh. (1932), p. 684;
Frémy (19332), p. 98, Lám. (25, Fig. 3; Halperin (1967), p. 291, Lam
Figs. 4-6; Lám. 9, Figs. 2-4; Ardré (1969), p. 156; Halperin (1970), p. 65.
Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
1975, p. 20, Pie. 040):

Tolypothrix Kuetzing, Phycol. gen., p. 227, 1843

Tolypothrix distorta Kuetz. var. fusca Schwabe, Verh. Deutschen Wiss. Vereins,
Santiago, p. 127, 1936.
Cita para Chile.— Prov, Aconcagua, Zapallar (Schwabe, loc. cit.); Prov. Val-

paraíso, Viña del Mar (Schwabe, loc. cit.); Prov. Valdivia, Termas de Puyehue
(Schwabe, loc. cit.).

Tolypothrix distorta var. penicillata (Ag.) Lemm., Kryptogamen-fl. Mark Brand.
3, p. 218, 1910.

Geitler in Rabenh. (1932), p.719, Fig. 461; Martínez Bustos (1934), p. 25;
González Guerrero (1950), p. 56, Lám. 4, Fig. 1.

Cita para Chile.— Prov. Valparaíso, Viña del Mar (Schwabe, 1936 b, pp. 118
y 127).

29%

Tolypothrix distorta var, symplocoides Hansg., Prodr. Algfl. Bóhmen 2, p. 39,
1892.

Geitler in Rabenh. (1932), p. 712.

Cita para Chile.— Prov. Aysén, Lago Risopatrón (Schwabe, 1936 b, p. 125).

Tolypothrix fusca Schwwabe, Bol. Soc. Biol. Conc. 10, p. 117, Fig. 12, 1936.

Cita para Chile.— Prov. Valdivia, Termas de Puyehue (Schwabe, loc. cit.)

Tolypothrix lanata Wartm. in Rabenh., Alg. NO 768, 1858.

Forti in De Toni (1907), p. 542; Tilden (1910), p. 230, lám. 14, Fig. 1; Geitler
in Pascher (1925), p. 257, Fig. 303; Geitler in Rabenh. (1932), p. 716, Fig. 459 d;
Smith (1950), p. 589, Fig. 507 B; Prescott (1951), p. 537, Lám. 125, Fig. 7.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Pta, Arenas, Laguna Sarmiento (Borge,
15901, p. 29).

Tolypothrix limbata Thuret in Bornet et Thuret, Rév. 3, p. 124,..1887:
Bornet et Flahault (1887), p. 124; Setchell et Gardner (1903), p. 196; Forti in
De Toni (1907), p. 550; Tilden (1910), p. 234; Geitler in Rabenh. (1932),
pS Fip, t14a.

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Río Peulla en rocas de la Cascada de
los Novios (TI homasson 1963, p. 40).

Tolypothrix tenuis Kuetz., Phycol. gen., p. 228, 1843,

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 122; Forti in De Toni (1907), p. 545; Tilden
(1910), p. 229; Geitler in Pascher (1925), p. 255; Prescott (1931), p. 43; Smith
(1931), p. 184; Geitler in Rabenh. (1932), p. 716; Frémy (1933 a), p. 168,
lám. 53, Fig. 2; Smith (1950), p. 588, Fig. 507 A; Drouet (1957), p. 2; Geitler
(1960), p. 35, Fig. 35a.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Pta. Arenas, Monte Chico, Laguna Chica
(Borge, 1901, p. 29), Isla Dawson sobre Colobanthus (Hariot, 1892, p. 1428).

Scytonema Syst. Algarum, p. 26, 1824

Scytonema caldarium Setchell, Erythea 7, p. 48, Lám. 3, Fig. 3, 1829,
Geitler in Pascher (1925), p. 267; Geitler in Rabenh. (1932), p. 754.
Cita para Chile.— Prov. Valdivia, Termas de Puyehue (Schwabe, 1936 b, p. 128).

Scytonema hoffmanni Ag., Syn. Alg. Suec., p. 117, 1817.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 97; Forti in De Toni (1907), p. 513; Tilden
(1910), p. 216, Lám. 12, Fig. 4; Geitler in Pascher (1925), p. 268, Fig. 317;
Geitler in Rabenh. (1932), p. 772, Fig. 495; Sampaio (1948), p. 8; Sampaio

DB

(1962), p. 37, Lám. 6, Figs. 1-11; Acleto (1969), p. 3, Lám. 1, Figs. 6-7; Lám. 2,
Figs. 5-8; Fernández Honores (1969), p. 55, Lám. 7, Fig. 97.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Bahía Orange, sobre Hymenophyllum
(Hariot, 1892, p. 1428).

Hydrocoryne Schwabe in Sprengl. Syst. Veg. 4, 1, p. 314, 1827

Hydrocoryne spongiosa Schwabe, loc. cit.

Kirchner in Engler und Prantl (1900), p. 78, Fig. 57 E; Geitler in Pascher
(1925), p. 277, Fig. 328; Geitler in Rabenh. (1932), p. 798, Fig. 511; Frémy
(1953 a), p. 16% Lám. 51, Figió3.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Pta. Arenas, Río Ruben, en una laguna
chica salada (Borge, 1901, Po 20):

NOSTOCACEAE

Cylindrospermum Kuetzing, Phycol.gen., p. 211, 1843

Cylindrospermum catenatum Ralfs, Ann. Mag. Nat. Hist. 5, p. 388, Lám. 8,
Fig. 14, 1850:

Setchell et Gardner (1919), p. 193; Tilden (1910), p. 201, Lám. 10, Fig 8

Geitler in Pascher (1925), p. 337; Prescott (1931), p. 39, Lam. 4, Figs 103

Geitler in Rabenh. (1932), p. 823; Prescott (1951), p. 529, Lám. 122, Figs. 9-10.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Pta. Arenas, Monte Chico (Borge, 1901,

p. 30).

Cylindrospermum maius Kuetz., Phycol. gen., p. 212, 1843.

Bornet et Flahault (1888), p. 252; Forti-in De Toni (1907), p. 474; Tilden
(1910), p. 199, Lám. 10, Fig. 4; Geitler in Rabenh. (1932), p. 815, Fig. 520 b.,
Cita para Chile.— Prov. Cautín, en rocas al lado del lago Villarrica (Tho-
masson- 1963, pp. 22 y 23).

Cylindrospermum muscicola Kuetz., Phycol. germ., p. 173, 1845.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 254; Forti in De Toni (1907), p. 477; Tilden
(1910), p. 200, Lám. 10, Fig. 6; Geitler in Pascher (1925), p. 336; Geitler in
Rabenh. (1932), p. 822, Fig. 520 d; Smith (1950), p. 586, Fig. 504; Prescott
(1951), p. 531, Lám. 122, Fig. 16; Fott (1971), p. 49, Fig. 18.2.

Citas para Chile.— Prov. Coquimbo, Fray Jorge y Talinay (Schwabe, 1970,
p. 365).

Cylindrospermum stagnale (Kuetz.) Born. et Flah. var. angustum G.M, Smith,
Bull. Torrey Bot. Club, p. 43, Lám. 26, Fig. 24, 1916.

2

Geitler in Pascher (1925), p. 335; Geitler in Rabenh. (1932), p. 820; Prescott
(1951), p. 532, Lám. 123, Fig. 1.
Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. C-6).

Cylindrospermum stagnale (Kuetz.) Born. et Flah. f. fontinalis Schwabe, Verh.
Deutschen Wiss. Vereins, Santiago, 3, p. 135, Fig. 12, 1936.

Cita para Chile.— Prov. Ñuble, Chillán, Fundo Santa Lucía (Schwabe, 1936 b,

po135, Fig. 12)

Cylindrospermum stagnale f. limariense Schwabe, Amazonia 2(3), p. 365,
Figs. 9-11, 1970.

Cita para Chile.— Prov. Coquimbo, Fray Jorge y Talinay (Schwabe, 1970,

p. 365).

Cylindrospermum stagnale f. naviculoides Schwabe, Verh. Deutschen Wiss.
Vereins, Santiago, 3, p. 133, Fig. 11, 1936.
Cita para Chile.— Prov. Valparaíso, Viña del Mar (Schwabe, 1936 b, p. 133).

Nostoc Vaucher, Hist. Conf. d'eau douce, p. 203, 1803

Nostoc kihlmani Lemm., Ber. Duetsch. Bot. Ges., p. 31, 1900.

Geitler in Pascher (1925), p. 306, Fig. 355; Geitler in Rabenh. (1932), p. 855,
Fig. 544; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 197, Figs. 97, 99.

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos (Fhomasson, 1963,

p- 66).

Nostoc linckia (Roth) Born. et Flah., Notes algol. 2, p. 86, Lám. 18, Figs. 1-12,
1880.

Forti in De Toni (1907), p. 391; Tilden (1910), p. 166, Lám. 7, Fig. 1; Seckt
(1924), p. 82; Geitler in Pascher (1925), p. 298, Fig. 346; Newton (1931), p. 44;
Prescott (1931), p. 40; Smith (1931), p. 183; Geitler in Rabenh. (1932), p. 838,
Mie 1528 b; West et EFriisch (1932), p. 477,. Figs. 196 A, B;. Frémy (1933),
p. 175, Lám. 58, Fig. 1; Smith (1950), p. 584, Fig. 501 A; Prescott (1951).
p. 523, Lám. 119, Figs. 14-16; Bourrelly et Manguin (1952), p. 155.

Cita para Chile.— Provincia de Magallanes, Pta. Arenas, Monte Chico, Río
del Penitente (Borge, 1901, p. 29).

Nostoc linckia var. crispulum Bornet et Flahault, Rév. Nost. hét. 4, p. 193,
1886-1888.

Geitler in Pascher (1925), p. 298; Geitler in Rabenh. (1932), p. 838; Huber-

Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 196.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. C-11).

AS

Nostoc microscopicum Carm. sec. Harvey, in Hook., Brit. Fl. 5, p. 399,:1893
Bornet et Flahault (1886-1888), p. 210; Forti in De Toni (1907), p. 413; Tilden
(1910), p. 176, Lám. 8, Fig. 5; Geitler in Pascher (1925), p. 302; Taylor (1928),
p. 93, Geitler in Rabenh. (1932), p. 849; Sampaio (1959), p: 13:

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Pta. Arenas (Borge, 1901, p. 30).

Nostoc minutum Desm., Plantes Cryptog. Franc., NO 501, 1831.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 209; Forti in De Toni (1907), p. 411; Tilden
(1910), p. 174, Lám. 8, Fig. 3; Gain (1911), p. 373; Seckt (1924), p. 82; Geitler
in Pascher (1925), p. 303; Geitler in Rabenh. (1932), p. 850, Fig. 540; Frémy
(19332), p. 178, Lám. (59; Fig. 2.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Punta Arenas, Monte Chico (Borge, 1901,
p: 30):

Nostoc muscorum Ag. f. crassa Schwabe, Verh. Deutschen Wiss. Vereins San-
tiago, 3,-p. 128, Fig. 9.

Cita para Chile.— Prov. de Concepción, San Vicente (Schwabe, loc. cit.).

Nostoc muscorum Í. angusta Schwabe, Verh. Deutschen Wiss. Vereins, San-
tiago, 34, 131. Fig. 9, 1936,
Cita para Chile.— Prov. Valparaíso, Viña del Mar (Schwabe, loc. cit.).

Nostoc pruniforme Ag., Disp. Alg. Suec., p. 45, 1812.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 215; Forti in De “Poni (1907), p. 418; Tilden
(1910), p. 178, Lám. 8, Figs. 9-10; Seckt (1924), p. 82; Geitler in Pascher (1925),
p. 306; Taylor (1928), p. 93; Prescott (1931), p. 4l; Smith (195 prAss
Geitler in Rabenh. (1932), p. 860, Fig. 548; Tilden (1937), p. 95, Figs. 42 A-C;
Prescott (1951), p. 524, Lám. 120, Figs. 7-8; Aldave Pajares (1969), p. 20, Lám. 3,
Figs. 1-9. :
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Pta. Arenas, Lago Maravilla (Borge, 1901,
p. 30).

Nostoc punctiforme (Kuetz.) Hariot, J. Bot. (Morot), p. 31, 1891.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 189; Forti in De Toni (1907), p. 388; Tilden
(1910), p. 164, Lám. 6, Figs. 35-37; Carlson (1921), p. 9; Seckt (1924), p. 82;
Geitler in Pascher (1925), p. 295; Taylor (1928), p. 93; Smith (1931), p. 184;
Geitler in Rabenh. (1932), p. 834; Geitler (1960), p. 67, Figs. 57, 60 y 69;
Sampaio (1962), p. 42, Lám. 8, Figs. 1-2.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Espinoza, 1923, p. 95).

Nostoc sphaericum Vauch., Hist. Conf. d'eau douce, p. 223, 1803.
Bornet et Flahault (1886-1888), p. 208; Kirchner in Engler und Prantl (1900),

A

p. 73, Fig. 55.6-5; Forti in De Toni (1907), p. 409; Tilden (1910), p. 173,
Lám. 8, Fig. 2; Seckt (1924), p. 82; Geitler in Pascher (1925), p. 303; Prescott
(1931), p. 41; Geitler in Rabenh. (1932), p. 850, Fig. 539b; Frémy (1933 a),
p. 177, Lám. 59, Fig. 1; Martínez Bustos (1934), p. 33; Prescott (1951), p. 525,
Lám. 121, Figs. 6-9; Schwabe (1962), p. 517, Lám. 118, Fig. 4; Lám. 120,
Figs. 1-2; Aldave-Pajares (1969), p. 17, Lám. 2, Figs. 1-10.

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Pto. Montt (Espinoza, 1923, p. 95).

Nostoc verrucosum Vaucher, loc. cit., Pp. 225.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 216; Forti in De Toni (1907), p. 419; Tilden
(1910), p. 179, Lám. 8, Figs. 11-16; Seckt (1924), pp. 82 y 98; Geitler in Pascher
(1925), p. 306, Fig. 356; Geitler in Rabenh. (1932), p. 854, Figs. 43, 542-543;
Prescott (1951), p. 526, Lám. 121, Figs. 11-13.

Citas para Chile.— Prov. Magallanes, Punta Arenas, Río Baguales, Laguna
Blanca, Río Tres Pasos, Monte Chico y Río del Penitente (Borge, 1901, p. 30);
Prov. Llanquihue, Río Peulla, en rocas en Cascada de los Novios (Thomasson
1963, p. 40).

Nodularia Mertens, in Juergens, Alg. aqu. Decas 15, NO 4, 1822

Nodularia spumigena Mertens, loc. cit.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 245; Forti in De Toni (1907), p. 433; Tilden
(1910), p. 184; Geitler in Pascher (1925), p. 289; Prescott (1931), p. 40; Geitler
in Rabenh. (1932), p. 866; Frémy (1933 a). p. 181, Lám. 60, Fig. 4; Smith (1950),
p. 586, Fig. 505 A; Prescott (1951), p. 527, Lám. 122, Figs. 3-5; Guarrera et al
(1968), p. 303, Lám. 16, Fig. 6.

Citas para Chile.— Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos (Thomasson, 1963,
p- 66); Prov. Magallanes, Pta. Arenas, Monte Chico (Borge, 1901, p. 30).

Nodularia spumigena var. litorea (Thur.) Born et Flah., Rév. Nost. hét., 4,
p. 246, 1886-1888.

Forti in De Toni (1907), p. 434; Tilden (1910), p. 185, Lám. 9, Figs. 7-8;

Geitler in Pascher (1925), p. 289, Fig. 339; Newton (1931), p. 46, Fig. 32;

Geitler in Rabeh. (1932), p. 867, Figs. 554 b-c; Frémy (1933 a), p. 181, Lám. 61,

Fig. 1; Guarrera et al. (1969), p. 303, Lám. 16, Fig. 7.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. C-9).

Nodularia spumigena Mert. var. genuina Bornet et Flahault,

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 30).

pen. 3%

Nodularia spbumigena var. maior (Kuetz.) Born. et Flah., loc. cit., p. 247.
Forti in De Toni (1907), p. 433; Tilden (1910), p. 185; Geitler in Rabenh.
(1932), p. 867.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Punta Arenas (Borge, 1901, p+30);

Anabaena Bory, Dict. class. d'Hist. Nat. 1, p. 307, 1822

Anabaena azollae Strasb., Bot. Prakt., p. 382, Fig. 124, 1884,

Seckt (1924), p. 83; Geitler in Pascher (1925), p. 329; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 898; Prescott (1951), p. 513, Lám. 115, Figs. 12-13.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Espinosa, p. 95, 1923).

Anabaena catenula (Kuetz.) Born. et Flah., Rév. Nost. hét. 4, p. 233, 1886-1888.
Tilden (1910), p. 191, Lám. 11, Fig. 17; Geitler in Pascher (1925), p. 318,
Fig. 370; Smith (1931), p. 183; Geitler in Rabenh. (1932), p. 894; Frémy (1933 a),
p. 184, Lám. 61, Fig. 4.

Cita para Chile.— Prov. Cautín, Lago Villarrica (Thomasson, 1963, p. 102).

Anabaena catenula (Kuetz.) Born et Flah. var. affinis (Lemm.). Geitler in
Rabenh. Kryptogamenfl., p. 894, 1932,

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos (Thomasson, 1963,

p. 65) como Anabaena affinis Lemm.

Anabaena chilensis Montagne in Gay, Hist. Fis. Polit. Chile, Bot. 8, p. 387,
1852.
Cita para Chile.— Prov. Coquimbo, aguas termales del Toro (Gay, loc. cit.).

Anabaena circinalis Rabenh., Alg. Eur., NO 209, 1852,

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 230; Tilden (1910), p. 190, lám. 9, Fig. 15;
Smith (1920), p. 59, Lám. 9, Figs. 4-5; Seckt (1924, pp. 83 y 98; Geitler in
Pascher (1925), p. 324; Geitler in Rabenh. (1932), p. 891; Prescott (1931), p. 37;
Frémy (1933 a), p. 184, Lám. 61, Fig. 3; Smith (1933), p. 88, Fig. 46 a; Huber-
Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 214, Fig. 135; Smith (1950), p. 582,
Fig. 498 a; Komarek in Komarek et Ettl (1958), p. 139, Lám. 17, Figs. 2-6;
Fort (IR), p. Direc.

Cita para Chile.— Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria, 1971,
p. 302, Lám. 6, Fig. 2).

Anabaena constricta (Szafer) Geitler in Pascher, Siissswasserfl., 12, p. 312, 1925.
Geitler in Rabenh. (1932), p. 874, Fig. 475 a-c.

O

Citas para Chile.— Prov. Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. C-8); Prov. Con-
cepción, Estero Lenga (Parra y González en Rivera et al., 1973, p. 52, Lám. 9,
Fig. 8).

Anabaena flos-aquae (Lyngb.) Bréb., in Bréb. et Godey, Alg. Falaise, p. 36,
1855.

Bornet et Flahault (1888), p. 228; Kirchner in Engler et Prantl (1900) p. 75,
Fig. 56 D; Tilden (1910), p. 189, Lám. 11, Fig. 14; Smith (1920), p. 60, lám. 10,
Figs. 2-4; Seckt (1924), p. 98; Geitler in Pascher (1925), p. 322, Fig. 379; West
et Fritsch (1927), p. 481, Fig. 198 E; Taylor (1928), p. 91; Prescott (1931), p. 37,
Lám. 4, Figs. 7-12; Geitler in Rabenh. (1932), p. 890, Fig. 571 a-b; Martínez
Bustos (1934), p. 34, Lám. 1, Fig. 6; Drouet (1938), p. 288; Prescott (1951),
p. 515, Lám. 116, Fig. 7; Skuja (1955), p. 77, Fig. 5; Komarek in Komarek
et Ettl (1958), p. 142, Lám. 18, Figs. 1-8; Guarrera et al. (1968), p. 300,lám. 16,
Fig. 1.

Citas para Chile.— Prov. Valdivia, Lagos Riñihue y Panguipulli (Thomasson,
1955, p. 202 y 206); Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos (Thomasson,
1963, p. 65); Prov. Magallanes, Punta Arenas, Laguna Grande (Borge, 1901,
p. 30). Prov. Valdivia, Lago Quilleihue (Asprey et. al. 1964, p. 19); Prov. Ma-
gallanes, Lagunas II y III (Asprey et. al. 1964, p. 19).

Anabaena solitaria Kleb. f. planctonica Komarek in Komarek et Ettl. Algol.
Stud., p. 129, fot. 9, 1-3, 1958.

Nota: La especie Anabaena solitaria Kleb., Flora, p. 270, lám. 4, Fig. 25,

1895, aparece et Geitler (1932) como sinónimo de Anabena catenula (Kuetz.)

Born. et Flah. var. solitaria (Kleb.) Geitler; Komarek revive la especie Anabaena

solitaria Kleb. y crea la forma planctonica.

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos (Thomasson, 1963,

p- 65).

Anabaena spiroides Klenbahn var. minima Nyg., Dansk Plante-Plankton, p. 52,
Lám. 1, Fig. 12, 1945.

Nygaard (1949), p. 202, Fig. 121; Hortobagyi (1968).

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Lato Todos los Santos (Thomasson, 1963,

p- 65).

Anabaena thermophila Schwabe, Bol. Soc. Biol. Conc., 10(2), p. 118, Fig. 14,

1936.

Cita para Chile.— Prov. Valdivia, Termas de Puyehue (Schwabe 1936 b, p. 132,
Fig. 10); Prov. Osorno, Lago Rupanco (Schwabe 1936 b, p. 132, Fig. 10) y
para los mismos lugares (Schwabe 1936 a, p. 118, Fig. 14).

AB

Anabaena torulosa (Carm.) Lagerh., ofvers. Fórh. Kongl. Svenska Vetensk.-
Akad., p. 17, 1883.

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 236; Forti in De Toni (1907), p. 455; Tilden
(1910), p. 192, Lám. 9, Fig. 19; Geitler in Pascher (1925), p. 328, Fig. 389;
Prescott (1931), p. 38; Newton (1931), p. 45; Geitler in Rabenh. (1932), p. 887,
Fig. 567 d; Frémy (1933 a), p. 186, Lám. 62, Fig. 1; Huber-Pestalozzi in Thie-
nemann (1938), p. 211, Fig. 126; Prescott (1951), p. 518; Ardré (1969), p. 162,
Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Estero de Reloncaví, Bahía de Ralún,
Bahía Petrohué (Levring, 1960, p. 27).

Anabaena variabilis Kuetz., Phycol. gen., p. 210, 1843,

Bornet et Flahault (1886-1888), p. 226; Forti in De Toni (1907), p. 437; Tilden
(1910), p. 187, Lám. 9, Fig. 9; Geitler in Pascher (1925), p. 317, Fig. 363; Newton
(1931), p. 44; Prescott (1931), p. 38; Geitler in Rabenh. (1932), p. 876; Fig. 558;
Frémy (1933 a), p. 182, Lám. 61, Fig. 2; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938),
p. 205, Fig. 111; Prescott (1951), p. 519, Lám. 118, Figs. 9-10.

Cita para Chile.— Prov. Chiloé, Bahía de Ancud (Levring, 1960, p. 27).

OSCTELATORIACEAE

Spirulina Turpin, Dict. d'Hist. Nat. de Levrault, 50, 1829

Spirulina abbreviata Lemm., Forsch. Ber. Plón, 3, p. 64, Figs. 12-15, 1910.
Geitler in Pascher (1925), p. 346; Geitler in Rabenh. (1932), p. 926, Fig. 592 b.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Magallanes (Borge, 1901, p. 31, Lám. 1,
Hips 13).

Spirulina albida Kolkwitz, Kryptogamenfl. Brandenb., 5,p:137; 41909,
Geitler in Pascher (1925), p. 346; Geitler in Rabenh. (1952); p: 927%

Citas para Chile.— Prov. Concepción, Estero Lenga (Parra y González en
Rivera et al., 1973, p. 49, Lám. 8, Fig. 2 como Spirulina subsalsa Oersted),
Bahía de Concepción (González y Parra, 1975, p:. 215 Fig 143)

Spirulina breviarticulata (S. et G.) Geitler in Rabenhorst's, Kryptogamenfl.,
p. 922, Fig. 591 a, 1932.

Setchell et Gardner (19190 pr bi Fig. 26; Lám. 5, Fig. 18.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,

1975, p. 22, Figs. 46 y 47).

0

Spirulina labyrinthiformis Gomont, Monogr, Oscill., 16, p. 255, 1892,

Borge (1906), p. 11; Forti in De Toni (1907), p. 216; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 928; Frémy (1933 a), p. 134, Lám. 31, Fig. 25; Huber-Pestalozzi in Thiene-
mann (1938), p. 225, Lám. 57, Fig. 162; Umezaki (1961), p. 67, Lám. 10, Fig. 10;
Halperin (1967), p. 331, Lám. 5, Fig. 5; Halperin (1970), p. 68.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía de Concepción (González y Parra,
Op. 22, Fig. 44).

Spirulina maior Kuetz., Phycol. gen., p. 183, 1843.

Gomont (1892), p. 251, Lám. 7, Fig. 29; Kirchner in Engler et Prantl (1900),
p. 65, Fig. 52 G; Forti in De Toni (1907), p. 210; Smith (1920), p. 50, Lám. 78
Fig. 1; Geitler in Pascher (1925),p. 347, Fig. 412; Newton (1931), p. 15, Fig: 13;
Prescott (1931), p. 35, Lám. 4, Fig. 46; Smith (1931), p. 183; Geitler in Rabenh.
(1932), p. 930, Fig. 595; Frémy (1933 a), p. 131, Lám. 31, Fig. 18; Frémy (1933 b),
p. 33; Smith (1933), p. 78, Fig. 34 A; Drouet (1938), p. 190; Huber-Pestalozzi in
Thienemann (1938), p. 226, Figs. 165-166; Smith (1950), p. 574, Fig. 485 A;
Bourrelly et Manguin (1952), p. 164, Lám. 15, Fig. 70; Acleto (1966), p. 20,
Lám. 3, Fig. 10; Guerrera et al. (1968), p. 293, Lám. 14, Fig. 2.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-15);
Santiago (Espinosa, 1923, p. 95).

Spirulina meneghiniana Zanardini, Atti R. Ist. Venet., 6, p. 80, 1847.
Gomont (1892), p. 250, Lám. 7, Fig. 28; Tilden (1910), p. 87, Lám. 4, Fig. 45;
Geitler in Pascher (1925), p. 346, Fig. 410; Geitler in Rabenh. (1932), p. 928,
Fig. 593 b; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 226, Lám. 67, Fig. 163.
Citas para Chile.— Prov. Concepción, Estero Lenga (Parra y González in
Rivera et al., 1973, p. 49, Lám. 8, Fig. 1, como Spirulina sunsalsa Oersted),
Bahía Concepción (González y Parra, 1975, p. 22, Figs. 41 y 42).

Spirulina princeps W. et G.S. West, Trans. Linn. Soc. London, Bot., 6, p. 205,
1902.

Smith (1920), p. 50, Lám. 7, Fig. 2; Borge (1925), p. 4; Geitler in Pascher
(1925), p. 348, Fig. 414; Prescott (1931), p. 36; Smith (1931), p. 183; Geitler
in Rabenh. (1932), p. 931, Fig. 593b; Tilden (1937), p. 65, Fig. 174;
Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 227, Fig. 170; Smith (1950), p. 514,
Fig. 485 B; Prescott (1951), p. 480, Lám. 108, Fig. 13.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A16).

Spirulina subsalsa Oersted, Nat. Tidskr., 17, Lám. 71, Fig. 4 18942
Gomont (1892), p. 253, Lám. 7, Fig. 32; Borge (1906), p. 11; Forti in De Toni
(1907), p. 214; Tilden (1910), p. 89, Lám. 4, Fig. 49; Newton (1931), p. ES;

E

Geitler in Rabenh. (1932), p. 927, Fig. 593 a; Frémy (1933 a), p. 133, Lám. 31,
Fig. 24; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 225, Lám. 57, Fig. 161;
Feldmann (1937), p. 26; Halperin (1967), p. 311, Lám. 5, Fig. 6; Lám. 11,
Fig. 5; Drouet (1968), p. 16, Figs. 1-7; Ardré (1969), p. 174; Halperin (1970),
a. dE

Citas para Chile.— Prov. Concepción, Estero Lenga (Parra y González in Rivera
et al., 1973, p. 49, Lám. 8, Figs. 1-2); Bahía Concepción (González y Parra,
1975, p. 29, Fig. 25):

Spirulina tenerrima Kuetz., Phycol. gen., p. 183, 1843.

Gomont (1892), p. 252; Forti in De Toni (1907), p. 213; Geitler in Pascher
(1925), p. 347; Geitler in Rabenh. (1932), p. 929; Frémy (1933 a), p. 132,
Lám. 31, Fig. 21.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-17).

Spirulina tenuissima Kuetz., Alg. Aq. Dulc. Germ. 14, p. 131, 1836.

Farlow (1881), p. 31; Geitler in Pascher (1925), p. 346, Fig. 409.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-14);
Prov. Llanquihue, Isla Llancahué (Schwabe, 1936 b, p. 137).

Pseudanabaena Lauterborn, Sapropel, Lebewelt, Verh.
Naturw. Verein Heidelb. 13, 1914-1917

Pseudanabaena chilensis Schwabe, Veh. Deutschen Wiss. Vereins, Santiago,
3,-p: -135,. Fig. 113, 1936:

Cita para Chile.— Prov. Concepción, San Vicente, Talcahuano (Schwabe, loc.

cit.); Prov. Llanquihue, Pto. Montt (Schwabe, loc. cit.); Prov. Aysén, Puyuhuapi

(Schwabe, loc. cit.).

Oscillatoria Vaucher, Hist. Conf. d'eau douce, p. 165, 1803

Oscillatoria agardhii Gomont, Monogr. Oscill., 16, p. 205, 1892.

Forti in De Toni (1907), p. 149; West (1908), p. 21; Tilden (1910), p. 62,
Lám. 4, Fig. 2; Seckt (1924), p. 97; Geitler in Pascher (1925), p. 369, Figs. 455-
456; Prescott (1931), p. 32; Geitler in Rabenh. (1932), p. 974, Figs. 618 y
621 a-h; Frémy (1933 a), p. 123, Lám. 31, Fig. 4; Martínez Bustos (1934), p. 28;
Prescott (1951), p. 484, Lám. 108, Figs. 15-16; Komarek in Komarek et Ettl
(1958), p. 166, Lám. 19, Fig. 10; Hortobagyi (1968), p. 155, Fig. 26.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Concepción, San Vicente y Dichato
(Schwabe, 1936, p. 137, Fig. 14); Prov. Llanquihue, Pto. Montt (Schwabe,loc.
cit.) y Prov. Aysén, Puyuhuapi (Schwabe, loc. cit.).

199.

Oscillatoria amphibia Ag., Flora, 10, p. 632, 1827.

Gomont (1892), p. 221, Lám. 7, Figs. 4 y 15; Borge (1906), p. 10; Forti in
De Toni (1907), p. 169; Gain (1911), p. 372; Setchell et Gardner (1919), p. 63;
Carlson (1921), p. 7; Seckt (1924), p. 81; Prescott (1931), p. 32, Lám. 3, Figs. 1-3;
Geitler in Rabenh. (1932), p. 966; Frémy (1933 a), p. 122, Lám. 31, Fig. 2;
Tilden (1937), p. 66, Figs. 18 A-E; Frémy (1938), p. 32; Prescott (1951), p. 485,
Lám. 109, Fig. 6; Bourrelly et Manguin (1952), p. 159, Lám. 19, Figs. 157-158;
Feldmann (1958), p. 24; Umezaki (1961), p. 73, Lám. 11, Fig. 9.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra,
1975, p. 24, Figs. 48 y 49).

Oscillatoria animalis Ag. f. chilensis Schwabe, Verh. Deutschen Wiss. Vereins,
Santiago, 3, p. 139, Fig. 15, 1936.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, San Vicente (Schwabe, loc. cit.).

Oscillatoria borneti Zukal, Ber. Deutsche Bot. Ges. 12, p. 260, Lám. 19, Figs. 15,
1894 (como Lyngbya borneti).

Geitler in Pascher (1925), p. 357, Fig. 434; Geitler in Rabenh. (1932), p. 956,

Figs. 585 y 609; Martínez Bustos (1934), p. 97; Huber-Pestalozzi in Thienemann

(1938), p. 234, Fig. 179; Prescott (1951), p. 486, Lám. 108, Figs. 19-20; Geitler

(1960), p. 16, Fig. 10.

Citas para Chile.— Prov. Cautín, Lago Villarrica (T'homasson, 1963, p. 56).

Oscillatoria borneti f. tenuis Skuja, Acta Horti Bot. Univ. Latv., p. 18, Lám. L,
Fig. 16, 1929.
Cita para Chile.— Prov. Cautín, Lago Pichilafquén (Thomasson, 1963, p. 56).

Oscillatoria brevis (Kuetz.) Gomont, Monogr. Oscill., p. 229, Lám. 7, Figs. 14-15,
1892.

Forti in De Toni (1907), p. 180; Tilden (1910), p. 79, Lám. 5, Fig. 32; Fritsch
(1911-1912), p. 333; Setchell et Gardner (1919), p. 65; Seckt (1924), p. 81;
Borge (1925), p. 4; Geitler in Pascher (1925), p. 371, Fig. 457; West et Fritsch
(1927), p. 470, Fig. 191 E; Prescott (1931), p. 33, Lám. 3, Fig. 6; Geitler in
Rabenh. (1932), p. 977, Fig. 619 a; West et Fritsch (1932), p. 470, Fig. 191 E;
Martínez Bustos (1934), p. 26; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 241,
Fig. 193; Frémy (1938), p. 32; Sampaio (1948), p. 7; Umezaki (1961), p. 69,
Lám. 11, Fig. 8; Sampaio (1964), p. 19.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-5);
Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra, 1975, p. 25, Fig. 50).
Prov. Magallanes, Lago Pehoé y Laguna III (Asprey et al. 1964, p. 19).

10”

Oscillatoria curviceps Ag., Syst. Algarum, p. 68, 1824.

Gomont (1892), p. 233, Lám. 6, Fig. 14; Forti in De Toni (1907), p. 157;
Tilden (1910), p. 67, Lám. 4, Fig. 7; Geitler in Pascher (1925), p. 359, Fig. 422;
Prescott (1931), p. 33, Lám. 3, Figs. 7-8; Geitler in Rabenh. (1932), p. 947,
Fig. 598 b; Frémy (1933 a), p. 117, Lám. 30, Fig. 5; Prescott (1951), p. 487,
Lám. 108, Figs. 17-18.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Magallanes (Borge, 1901, p. 30).

Oscillatoria chalybea Mertens, in Júrgens, Alg. aqu. Decas 13, NO 4, 1822,
Gomont (1892), p. 232, Lám. 7, Fig. 19; Borge (1906), p. 11; Forti in De Toni
(1907), p. 185; Tilden (1910), p. 82, Lám. 6, Fig. 36; Geitler in Pascher (1925),
p. 364, Fig. 430; Taylor (1928), p. 90; Prescott (1931), p. 33; Smith (1931),
p. 182; Geitler in Rabenh. (1932), p. 956, Fig. 608 b; Drouet (1938), p. 289;
Prescott (1951), p. 486, Lám. 109, Figs. 8-9.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. A-2).

Oscillatoria geitleri Frémy, Arch. Bot. Mém., 216, Fig. 185, 1930.

Geitler in Rabenh. (1932), p- 967, Fig. 611 e.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahia de Concepción (González y Parra,
1975, Fig... 51).

Oscillatoria irrigua Kuetz., Phycol. gen., p. 189, 1843.

Gomont (1892), p. 218, Lám. 6, Figs.22-23; West (1908), p. 39; Geitler in
Pascher (1925), p. 363; West et Fritsch (1927), p. 470, Fig. 191 C; Geitler in
Rabenh. (1932), p. 961, Figs. 611 a-b; Hortobagyi (1968), p. 155, Fig. 27.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Magallanes (Borge, 1901, p. 30).

Oscillatoria jantiphora (Fior.-Mazz.) Gom., Monogr. Oscill., p. 233, Lám. 7,
Figs. 20-21, 1892.

Geitler in Pascher (1925), p. 367, Fig. 462; Geitler in Rabenh. (1932), p. 977.
Cita para Chile. Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-7).

Oscillatoria laetevirens (Crouan) Gomont, Monogr. Oscill., p. 226, Lám. 7,
Fig. 11, 1892.

Tilden (1910), p. 78, Lám. 4, Fig. 28; Setchell et Gardner (1919), p.64; Newton
(1931), p. 18; Geitler in Rabenh. (1932), p. 949, Fig. 603 c; Frémy (1933 a),
p. 126, Lám. 31, Fig. 12; Chapmann (1956), p. 354, Fig. 3, NO 1; Feldmann
(1958), p. 34; Halperin (1967), p. 317, Lám. 6, Fig. 6; Ardré (1969), p. 172;
Halperin (1970), p. 61.

Citas para Chile.— Prov. Concepción, Estero Lenga como Porfphyrosiphon
notaristi (Menegh.) Kuetz. (Parra y González et Rivera etal., 1973, p. 3%
Lám. 9, Fig. 6) y Bahía Concepción (González yParra, 1975, p. 26, Fig. 53).

=ME

Oscillatoria limnetica Lemm., Ber. Deutsch. Bot. Ges., p. 310, 1900.

Forti in De Toni (1907), p. 171; Seckt (1924), p. 81; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 963, Figs. 611-1 y 612-b; Frémy (1933 a), p. 123, lám. 31, Fig. 3; Huber-
Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 235, Lám. 50, Fig. 183; Prescott (1951),
p. 488, Lám. 109, Fig. 16; Komarek in Komarek et Ettl (1958), p. 165, Lám. 19,
Fig. 9.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra,
1975, p. 26, Fig. 54).

Oscillatoria limosa Ag., Disp. Alg. Suec., p. 35, 1812.

Wille (1883), p. 44; Gomont (1892), p. 210, Lám. 6, Fig. 13;Kirchner in Engler
et Prantl (1900), p. 65, Fig. 52 A-1; Forti in De Toni (1907), p. 154; Tilden
(1910), p. 65, Lám. 4, Fig. 6; Seckt (1924), p. 81; Borge (1925), p. 3; Geitler
in Pascher (1925), p. 357, Fig. 420; West et Fritsch (1927), p. 470, Fig. 191 B;
Prescott (1931), p. 33; Smith (1931), p. 182; Geitler in Rabenh. (1932), p. 944,
Fig. 588 d; Frémy (1933 a); p. 217, Lám. 30, Fig. 4; Smith (1933), p. 79,
Fig. 36 B; Tilden (1937), p. 67, Fig. 19; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938),
p. 233, Fig. 174; Guarrera et al. (1968), p. 295, Lám. 14, Fig. 5; Fott (1971),
Pp 3oSLFig 14.5.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-2)
como O. froelichiz Kuetz.; Santiago (Licuime, loc. cit., lám. B-4); Prov. Maga-
llanes, Magallanes, Monte Chico y Río Pescado, 1901, p. 28).

Oscillatoria limosa f. constricta Biswas, J.Fed. Malay States Mus. 14, p. 408,
1929.

Cita para Chile.— Prov. Valdivia, Lago Riñihue (Thomasson, 1955, p. 202).

Oscallatoria margaritifera Kuetz., Tabulae phycol., 1, p. 31, 1845.

Gomont (1892), p. 216, lám. 6, Fig. 19; Tilden (1910), p. 69, Lám. 4, Fig. 2;
Setchell yGardner(1919), p. 61; Newton (1931), p. 16, Fig. 14; Geitler in Ra-
benh. (1932), p. 942, Fig. 597 b; Frémy (1933 a), p. 120, Lám. 31, Fig. 1; Tilden
(1937), p. 65, Fig. 17 c; Frémy (1938), p. 31; Chapman (1956), p. 353, Fig. 4,
N0 3; Umezaki (1961), p. 68, lám. 11, Fig. 2.

Citas para Chile.— Prov. Concepción, Estero Lenga, como Microcoleus irriguus
(Kuetz.) Drouet (Parra y González en Rivera et al., 1973, p. 52, Lám. 9, Fig. 2),
Bahía Concepción (González y Parra, 1975, p. 27, Fig. 55).

Oscillatoria nigro-viridis Thwaites in Harvey, Phycol. Brit. 3:39, Lám. 251 a,
1849.

Gomont (1892), p. 217, Lám. 6, Fig. 20; Forti in De Toni (1907), p. 161; Tilden
(1910), p. 69, Lám. 4, Fig. 12; Carlson (1921), p. 6; Newton (1931), p. 16;

na

Geitler in Rabenh. (1932), p. 942, Fig. 597 c; Feldmann (1937), p. 24; Frémy
(1938), p. 32; Chapman (1956), p. 354; Feldmann (1958), p. 34; Umezaki
(1961),, p. 70, Lám. 11, Fig. 5; Halperin (1967), p..316, Lám. 6, Flg9.19-5;
Lám. 12, Fig. 4; Halperin .(1970),..p.. 63.

Citas para Chile.— Prov. Concepción, Estero Lenga como O. lutea Ag. (Parra
y González en Rivera etal., 1973, p. 50, Lám. 8, Fig. 9); Bahía Concepción
(González y Parra, 1975, p. 27, Figs. 56 y 57).

Oscillatoria okenii Agardh, Flora, 10, p. 633, 1827.

Gomont (1892), p. 232, Lám. 7, Fig. 18; Forti in De Toni (1907), p. 185; Tilden
(1910), p. 81, Lám. 4, Fig. 35; Setchell y Gardner (1919, p. 66; Geitler in
(1910), p. 81, Lám. 4;Fig. 35; Setchell y Gardner (1919), p. 66; Geitler in
Pascher (1925), p. 372, Fig. 463; Smith (1931), p. 182; Geitler in Rabenh.
(1932), p. 969, Fig. 608 a; Frémy (1933 a), p. 127, Lám. 31, Fig. 13; Drouet
(1938), p. 289; Bourrelly et Manguin (1952), p. 160, Lám. 19, Figs. 144-145.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-6;
Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra, 1975, p. 28, Fig. 58).

Oscillatoria ornata Kuetz., Tabulae phycol. 1, p. 30, Lám. 42, Fig. 9, 1845-1849.
Gomont (1892), p. 214, Lám. 6, Fig. 15; Forti in De “Toni (1907), p. 158;
Tilden (1910), p. 67, Lám. 4, Fig. 8; Geitler in Pascher (1925), p. 357, Fig. 419;
Smith (1931), p. 182; Geitler in Rabenh. (1932), p. 944, Fig. 599a; Huber-
Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 233, Fig. 173; Prescott (1951), p. 489;
Bourrelly et Manguin (1952), p. 161, Lám. 19, Fig. 135.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. A-21);
Prov. Aconcagua, Zapallar (Schwabe, 1936, p. 139).

Oscillatoria percursa Kuetz., Phycol, gen., p. 189, 1843.

Forti in De Toni (1907), p. 187; Tilden (1910), p. 85.
Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. A-10).

Oscillatoria planctonica Woloszynska, Bull. Acad. Sci. Cracov., p. 530, 1911.
Geitler in Pascher (1925), p. 362, Fig. 426; Geitler in Rabenh. (1932), p. 962,
Fig. 612.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Estero Lenga como O. erytraea (Ehr.)
Kuetz. (Parra y González en Rivera et al., 1973, p. 50, Lám. 8, Fig. 3).

Oscillatoria princeps Vaucher, Hist. Conf. d'eau douce., p. 190, Lám. 15, Fig. 2,
1803.

Gomont (1892), p. 206, Lám. 6, Fig. 9; Kirchner in Engler et Prantl (1900),
p. 65, Fig. 52 A-2; Setchell et Gardner (1903), p. 182; Forti in De Toni (1907),

al

p- 150; Tilden (1910), p. 62, Lám. 4, Fig. 3; Borge (1918), p. 90; Seckt (1924),
p. 81; Borge (1925), p. 3; Geitler in Pascher (1925), p. 358, Fig. 421; Taylor
(1928), p. 90; Prescott (1931), p. 34, Lám. 3, Fig. 10; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 947, Figs. 598a y 601 c-g; Martínez Bustos (1934), p. 28; Drouet (1938),
p. 289; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 234, Fig. 175; Prescott
(1951), p. 489, Lám. 110, Fig. 1; Bourrelly et Manguin (1952), p. 161; Sampaio
(1962), p. 31; Acleto (1966), p. 16; Lám. 3, Fig. 1; Guarrera et al. (1968), p. 295,
Lám. 14, Figs. 6 y 6 a.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-3);
Prov. Concepción, Estero Lenga (Parra y González in Rivera et al., 1973, p. 50,
Lám. 8, Fig. 10).

Oscillatoria prolifica (Grev.) Gomont, Monogr. Oscill., 16, p. 205, Lám. 6,
Fig. 8, 1892.

Carlson (1901-1903), p. 7; Forti in De Toni (1907), p. 149; Tilden (1910),

p. 61, Lám. 4, Fig. 1; Geitler in Rabenh. (1932), p. 973, Fig. 620-c; Prescott

(1951), p. 490, Lám. 110, Figs. 2-3.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra,

1975, p. 28, Fig. 61).

Oscillatoria sancta (Kuetz.) Gomont, Monogr. Oscill., p. 209, Lám. 6, Fig. 12,
1892.

Forti in De Toni (1907), p. 152; Tilden (1910), p. 64, Lám. 4, Fig. 5; Carlson
(1921), p. 6; Seckt (1924), pp. 81 y 97; Geitler in Pascher (1925), p. 355,
Fig. 418; Taylor (1928), p. 90; Prescott (1931), p. 34; Smith (1931), p. 182;
Geitler in Rabenh. (1932), p. 943, Fig. 598-c; Martínez Bustos (1934), p. 27;
Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 233, Fig. 172; Prescott (1951),
p. 490, Lám. 110, Fig. 4; Bourrelly et Manguin (1952), p. 161, Lám. 19,
Figs. 132-134; Skuja (1955), p. 55, Lám. 5, Figs. 21-22; Acleto (1966), p. 17,
Lám. 3, Fig. 4.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-1).

Oscillatoria simplicissima Gomont, Monogr. Oscill., p. 219, Lám. 7, Fig. 1,
1892.

Gietler in Pascher (1925), p. 362, Fig. 429; Geitler in Rabenh. (1932), p. 961;

Martínez Bustos (1934), p. 26.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-9).

Oscillatoria splendida Grev., Flora Edinensis, p. 305, 1824,
Gomont (1892), p. 224, Lám. 7, Figs. 7-8; Kirchner in Engler et Prantl
(1900), p. 65, Fig. 52 A-3; Forti in De Toni (1907), p. 173; Tilden (1910) p. 76,

==

Lám. 4, Figs. 23-25; Fritsch (1911-1912), p. 333; Seckt (1924), pp. 81 y 97;
Geitler in Pascher (1925), p. 370, Fig. 449; Borge (1925), p. 3; West et Fritsch
(1927), p. 470, Fig. 191 F; Taylor (1928), p. 90; Smith (1931), p. 182; Geitler
in Rabenh. (1932), p. 972, Figs. 611 m-0; Figs. 620 d-£f; Smith (1933), p. 79,
Fig. 36C; Martínez Bustos (1934), p. 27; Drouet (1938), p. 289; Huber-
Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 237, Fig. 187; Prescott (1951), p. 491,
Lám. 110, Figs. 5-7; Bourrelly et Manguin (1952), p. 161, Lám. 19, Figs. 159-162,
Cita para Chile.— Prov. Cautín, Lago Pichilafquén (Thomasson, 1963, p. 56).

Oscillatoria subtilissima Kuetz., Tabulae phycol. 1, Lám. 38, Fig. 7, 1845-1849.
Forti in De Toni (1907), p. 171; Tilden (1910), p. 74; Geitler in Pascher (1925),
p. 360; Taylor (1928), p. 91; Prescott (1931), p. 34; Smith(1931), p. 182;
Geitler im Rabenh. (1932), p. 950.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-10).

Oscillatoria tenuis Ag., Alg. Dec. 2, p. 25, 1813.

Gomont (1892), p. 220, Lám. 7, Figs. 2-3; Forti in De Toni (1907), p. 166;
West (1908), p. 31; Tilden (1910), p. 71, Lám. 4, Figs. 17-18; Fritsch (1911-
1912), p.334;Gain (1911), p. 372; Borge (1918), p. 91; Smith (1920)4p.*52
Lám. 7, Fig. 6; Seckt (1924), pp. 81 y-97; Borge (1925), p. 3; Geitler in
Pascher (1925), p. 362, Figs.427-428 a; West et Fritsch (1927), p. 470, Fig. 191 D;
Prescott (1931), p. 34; Smith (1931), p. 182; Geitler in Rabenh. (1932), p. 959,
Figs. 611 f-g; Frémy (1933 a), p. 121, Lám. 30, Fig. 10; Martínez Bustos (1934),
p. 28; Huber-Pestalozzi in “Thienemann (1938), p. 235, Fig. 180; Bourrelly et
Manguin (1952), p. 161, Lám. 19, Fig. 140; Sampaio (1962), p. 33; Acleto (1966),
p. 17, Lám. 3, Fig. 5; Guarrera et al. (1968), p. 295, Lám. 15, Fig. 11.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-8);
Prov. Concepción, Estero Lenga como O. submembranacea Ard. et Straff. y
como Microcoleus lyngbyaceus (Kuetz.) Crouan (Parra y González in Rivera
Aaa pro0 y 31 lam. 8 Figs 6 y Cam: D “Pies. 425)

Oscillatoria tenuis var. natans Gomont, Monogr. Oscill., p. 221, 1892.
Forti in De Toni (1907), p. 168; Tilden (1910), p. 72; Geitler in Rabenh.
(1932), p. 959; Prescott (1951), p. 491, Lám. 110, Figs. 10-11; Sampaio (1963),

Dos.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Magallanes (Borge, 1901, p. 30).

Oscillatoria tenuis var. tergestina Rabenh., Fl. Eur. Alg., p. 102, 1865.

Gomont (1892), p. 221; Setchell et Gardner (1903), p. 183; Forti in De Toni
(1907), p. 168; Tilden (1910), p. 73; Geitler in Pascher (1925), p. 362, Fig. 428 b;

LR

Geitler in Rabenh. (1932), p. 959; Prescott (1951), p. 492, Lám. 110, Figs. 12-15;
Sampaio (1963), p. 4, Lám. 3, Fig. 4.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Magallanes (Borge, 1901, p. 31).

Oscillatoria terebriformis Ag., Flora 10, p. 634, 1827.

Gomont (1892), p. 234, Lám. 7, Fig. 24; Forti in De Toni (1907), p. 189;
Tilden (1910), p. 83, Lám. 4, Fig. 39; Geitler in Pascher (1925), p. 367, Fig. 144;
Smith (1931), p. 183; Geitler in Rabenh. (1932), p. 954, Fig. 607; Prescott
(1951), p. 492, Lám. 107, Figs. 25-26.

Citas para Chile.— Prov, Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 50, Lám. A-18);
Prov. Valdivia, Termas de Puyehue (Schwabe, 1936 a, p. 122).

Oscillatoria thiebautii (Gomont) Geitler in Rabenhorst's Kryptogamenfl.,
p. 967, Fig. 617 c-d, 1932.

Umezaki (1961), p. 75, Lám. 11, Fig. 11 como Skujaella thiebauti (Gomont)

De Toni.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra,

1975, p. 29, Figs. 59 y 60).

Phormidium Kuetzing, Phycol. gen., p. 190, 1843

Phormidium autumnale (Ag.) Gomont, Monogr. Oscill.,. p; 1
Fig. 23, 1892.

Borge (1906), p. 10; Forti in De Toni (1907), p. 252; Tilden (1910), p. 107,
Lám. 5, Figs. 18-19; Borge (1918), p. 91; Borge (1925), p. 4; Geitler in Pascher
(1925), p. 388, Fig. 494; Taylor (1928), p. 91; Prescott (1951), p.-34; ¿Geitler
in Rabenh. (1932), p. 1026, Figs. 652 K, 653 a; Frémy (1933 a), p. 93, Lám. 24,
Fig. 4; Smith (1933), p. 80, Fig. 37; Smith (1950), p. 576, Fig. 490; Prescott
(1951), p. 493, Lám. 107, Figs. 19-20; Sampaio (1964), p. 15, Lám. 2, Fig. 2;
Fott (1971), p. 51, Fig. 14.5.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Espinosa, 1923, p. 95); Santiago
(Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-15).

Phormidium biforme Schwabe, Verh. deutschen Wiss. Vereins, Santiago, 3,
p. 140, Figs. 17 a-d, 1936.

Schwabe (1936 a), p. 120, Fig. 15.

Citas para Chile.— Prov. Llanquihue, Esla Llancahué (Schwabe, loc. cit.);

Prov. Llanquihue, Río Puelo (Schwabe, loc. cit.).

Phormidium corium Gomont, J. Bot. (Morot) 4, p. 355, 1890.
Gomont (1892), p. 172, Lám. 5, Figs. 1-2; Newton (1931), p. 19) ie. ¿L5>

en A

Prescott (1931), p. 35, Lám. 3, Figs. 13-14; Frémy (1933 a), p. 89, Lám. 23,
Fig. 6; Guarrera et Kúhnemann (1949), p. 303; Sampaio (1948), p. 4; Prescott
(1951), p. 494; Schwabe (1962), p. 534, Lám. 125(17), Figs. 2-4; Sampaio (1964),
plo Lám. 1, Fig. 3.

Citas para Chile.— Prov. Valdivia, Lago Puyehue (Schwabe, 1936 b, p. 142);
Prov. Osorno, Lago Rupanco (Schwabe, loc, cit.); Prov. Llanquihue, Pto. Montt
(Schwabe, loc. cit.).

Phormidium ectocarpí Gomont, Bull. Soc. Bot. France, 46, p::37, Lamy
Fig. 13, 1899.

Geitler in Rabenh. (1932), p. 1000; Umezaki (1961), p. 59, Lám. 9, Fig. 4.

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra,

1975,.p:30;¿Elg. 62):

Phormidium fragile Gomont, Monogr. Oscill., p. 163, Lám. 4 Figs) Lal
1892.

Borge (1906), p. 9, Fig. 3; Forti in De Toni (1907), p. 220; Tilden (1910),

p. 93, Lám. 4, Figs. 52-53; Geitler in Pascher (1925), p. 378, Fig. 470; Newton

(1931), p. 19; Geitler in Rabenh. (1932), p. 999, Fig. 636 b; Frémy (1933 a),

p. 86, Lám. 22, Fig. 6.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-18).

Phormidium inundatum Kuetz., Spec. Algarum, p. 251, 1849.

Gomont (1892), p. 172, Lám. 4, Figs. 31-32; Setchell et Gardner (1903), p. 185;
Forti in De Toni (1907), p. 232; Tilden (1910), p. 100, Lám. 4, Figs. 69-70;
Geitler in Pascher (1925), p. 384, Fig. 486; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1019,
Fig. 649 a; Martínez Bustos (1934), p. 32; Sampaio (1948), p. 4; Prescott (1951),
p. 496, Lám. 107, Fig. 18.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-17).

Phormidium laminosum Gomont, J. Bot. (Morot) 4, p. 355, 1890.

Gomont (1892), p. 167, Lám. 4, Figs. 21-22; Borge (1906), p. 10; Forti in De
Toni (1907), p. 225; Tilden (1910), p. 96, Lám. 4, Fig. 62; Geitler in Pascher
(1925), p. 382, Fig. 482; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1005, Fig. 642 c; Frémy
(1933 a), p. 88, Lám. 23, Fig. 3; Sampaio (1964), p. 11, Lám. 1, Fig. 3.
Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-20);
Prov. Valdivia, Termas de Puyehue (Schwabe, 1936 b, p. 143); Prov. Osorno,
Lago Rupanco (Schwabe, loc. cit.); Prov. Llanquihue, Río Puelo (Schwabe,
loc. cit.); Prov. Llanquihue, Isla Llancahué (Schwabe, loc. cit.).

Phormidium molle Gomont, Monogr. Oscill. 16, p. 163, Lám. 4, Fig. 12, 1892.
Forti in De Toni (1907), p. 219; Geitler in Pascher (1925), p. 378, Fig. 417;

==

Geitler in Rabenh. (1932), p. 1000; Frémy (1933 a), p. 85, Lám. 22; Fig. 5;
Umezaki (1961), p. 58, Lám. 9, Fig. 3; Halperin (1967), p. 289, Lám. 2, Fig. 2
Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra,
1975, p. 30, Figs. 65-67).

Phormidium papyraceum (Ag.) Gomont, J. Bot, (Morot) 4, p. 355, 1890.
Gomont (1892), p. 173, Lám. 5,Figs. 3-4; Setchell et Gardner (1903), p. 185;
Tilden (1910), p. 101, Lám. 4, Figs. 73-74; Borge (1918), p. 91; Geitler in
Pascher (1925), p. 384, Fig. 488; Frémy (1933 a), p. 90, Lám. 23, Fig. 7; Frémy
(1933 b), p. 24; Drouet (1957), p. 2; Sampaio (1962), p. 26.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-16).

Phormidium purpurascens (Kuetz.) Gomont, J. Bot. (Morot), 4, p. 355, 1890.
Gomont (1892), p. 166, Lám. 4, Fig. 19; Forti in De Toni (1907), p. 223;
Tilden (1910), p. 96, Lám. 4, Fig. 59; Geitler in Pascher (1925), p. 380,
Fig. 476; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1009, Fig. 644c.

Cita para Chile.— Prov. Valdivia, Termas de Puyehue (Schwabe, 1936 b,
p. 142, Fig. 1).

Phormidium retzii (Ag.) Gomont, J. Bot. (Morot), 4, p. 355, 1890.
Gomont (1892), p. 175, Lám. 5, Figs. 6-9; Forti in De Toni (1907), p. 241;
Tilden (1910), p. 102, Lám. 4, Figs. 1-4; Geitler in Pascher (1925), p. 383,
Fig. 485; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1012, Fig. 647; Prescott (1951), p. 495,
Lám. 111, Fig. 6.

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue, Pto. Montt (Schwabe, 1935, p. 6, según
Drouet, 1968).

Phormidium subfuscum Kuetz., Phycol. gen., p. 195, 1843,

Gomont (1892), p. 182, Lám. 5, Figs. 17-20; Forti in De Toni (1907), p. 247;
Tilden (1910), p. 105, Lám. 4, Figs. 12-15; Geitler in Pascher (1925), p. 387,
Fig. 491; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1022, Figs. 652 d-g; Frémy (1933 a),
p. 92, Lám. 23, Fig. 8; González Guerrero (1941), p. 144, Fig. V. 43; Sampaio
(1948), p. 5; Prescott (1951), p. 496, Lám. 107, Fig. 16; Sampaio (1962), p. 30;
Sampaio (1964), p. 14.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-15).

Phormidium submembranaceum (Ard. et Straff.) Gomont, Monogr. Oscill.,
16, p. 180, Lám. 5, Fig. 13, 1892.

Forti in De Toni (1907), p. 244; Tilden (1910), p. 104, Lám. 5, Fig. 6; Setchell

et Gardner (1919), p. 71; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1023, Fig. 652 0;

Frémy (1933 a), p. 91, Lám. 24, Fig. 2; Umezaki (1961), p. 62, Lám. 10, Fig. 3;

Halperin (1967), p. 288, Ardré (1969), p. 171.

==

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra,
1975, p. 30, Figs. 63 y 64).

Phormidium subuliforme Gomont, Monogr. Oscill., 16, ps: 169 Limit;
Figs. 21-22, 1892.

Forti in De Toni (1907), p. 230; Tilden (1910), p. 99, Lám. 4, Fig. 67, Geitler

in Pascher (1925), p. 381, Fig. 479; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1011, Fig. 645 d.

Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B19).

Phormidium tenue (Menegh.) Gomont, Monogr. Oscill., 16, p. 169, Lám. 4,
Figs. 23-25, 1892.

Borge (1906), p. 10; Forti in De Toni (1907), p. 227; Tilden (1910), p. 98,
Lám. 4, Figs. 63-65; Geitler in Pascher (1925), p. 381, Fig. 478; Newton (1931),
p. 19; Prescott (1931), p. 35; Smith (1931), p. 183; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 1004, Figs. 642 d-e; West et Fritsch (1932), p. 472, Figs. 193 E-F; Frémy
(1933 a), p. 88, Lám. 23, Fig. 4; Sampaio (1948), p. 3; Prescott (1951), p. 496,
Lám. 111, Fig. 7; Bourrelly et Manguin (1952), p. 163, Lám. 17, Fig. 102.
Cita para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-21);
Prov. Magallanes, Lago Sarmiento y Lagunas II y III (Asprey et. al. 1964,
p: 19)

Phormidium tinctorium Kuetz., Phycol. gen., p. 35, Lám. 49, Fig. 3, 1845-1849,
Gomont (1892), p. 162, Lám. 4, Fig. 11; Forti in De Toni (1907), p. 218;
Tilden (1910), p. 94, Lám. 4, Fig. 55; Geitler in Pascher (1925), p. 380,
Fig. 474; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1003, Fig. 642 a.

Cita para Chile.— Prov. Aysén, Puyuhuapi (Schwabe, 1926 b, p. 144, Fig. 18).

Phormidium uncinatum Gomont, J. Bot. (Morot), 4, p. 355, 1890.
Gomont (1892), p. 184, Lám. 5, Figs. 21-22; Borge (1906), p. 10; Forti in
De Toni (1907), p. 250; Tilden (1910), p. 106, Lám. 5, Figs. 16-17; Seckt
(1924), p. 81; Geitler in Pascher (1925), p. 388, Fig. 493; Prescott (1931),
p. 35; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1025, Fig. 652 h, i; Frémy (1933 a), p. 9%,
Lám. 24, Fig. 5; Prescott (1951), p. 496, Lám. 107, Fig. 18; Bourrelly et
Manguin (1952), p. 163, Lám. 15, Figs. 66-67.

Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Isla Ultima Esperanza (Borge, 1901, p. 30).

Lyngbya Agardh, Syst. Algarum, p. 25, 1824

Lyngbya aestuarii Liebm., Maturhist. Tidsskr., p. 492, 1841.
Gomont (1892), p. 127, Lám. 3, Figs. 1-2; Forti in De Toni (1907), p. 262;
Tilden (1910), p. 120, Lám. 5, Figs. 40-41; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1052,

SS

Fig. 666; Frémy (1933 a), p. 104, Lám. 27, Figs. 1-5; Huber-Pestalozzi in Thie-
nemann (1938), p. 249, Fig. 211; Prescott (1951), p. 499, Lám. 111, Fig. 8;
Umezaki (1961), p. 49, Lám. 8, Fig. 1.

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Tilden (1910), p. 119, Lám. 5, Fig. 39; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1061,
Fig. 672 b; Frémy (1933 a), p. 106, Lám. 28, Fig. 2; Frémy (1933 b), p. 29;
Umezaki (1961), p. 53, Lám. 8, Fig. 2; Sampaio (1963, p. 4, Lám. 3, Figs. 1-2;
Halperin (1967), p. 297, Lám. 2, Figs. 11-12; Lám. 10, Fig. 3; Halperin (1970),
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Canal de Chacao, Península Laqui, Punta Corona, Archipiélago de los Chonos,
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Bourrelly et Manguin (1927), p. 157, Lám. 18, Fig. 116; Martínez Bustos
(1934), p. 30; Prescott (1951), p. 500, Lám. 112, Figs. 2-3; Umezaki (1961),
p. 45, Lám. 6, Fig. 2; Ardré (1969), p. 168.

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Gomont (1892), p. 167, Lám. 4, Figs. 6-7; Forti in De Toni (1907), p. 287;
Tilden (1910), p.111,Lám. 5, Figs. 22-23; Geitler in Pascher(1925), p. 397,
Figs. 500 y 506; Prescott (1931), p. 31, Figs. 11-12; Geitler in Rabenh. (1932),
p. 1044, Fig. 661 g-1; Huber-Pestalozzi in Thienemann (1938), p. 247, Fig. 203;

ys

Prescott (1951), p. 501, Lám. 112, Figs. 5-6; Hortobagyi (1968), p. 155,
Ei 21.
Cita para Chile.— Prov, Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-23).

Lyngbya lutea (Ag.) Gomont, J. Bot. (Morot), 4, p. 354, 1890.

Gomont (1892), p.141,Lám. 3, Figs. 12-13; Forti in De Toni (1907), p. 275;
Tilden (1910), p. 114, Lám. 5, Figs. 30-31; Geitler in Pascher (1925), p. 406;
Newton (1931), p. 24; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1057, Figs. 670 a-b; Frémy
(1933 a), p. 109, Lám. 28, Fig. 4; Frémy (1938), p. 30; Chapman (1956), p. 157,
Fig. 5 NO0 3; Feldmann (1958), p. 31; Umezaki (1961), p. 50, Lám. By FIGia;
Halperin (1967),p. 296, Lám. 2,Fig. 10; Ardré (1969), p. 167; Halperin (1970),
piiaza

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-14);
Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra, 1975, p. 32, Figs. 70
yl):

Lyngbya martenssana Menegh., Consp. Alg. eug., p. 12, 1837.
Gomont'"(1892)+p.*1450Lám. 3, Fig 17,2 Forti in “De Ton (MOMIA
Tilden' (1910), “p:"124, Lám.'5, “Fig: 43; Geitler “in“Pascher (1925) pm405
Fig. 521 a; Borge (1925), p. 4; Prescott:(1931),-p. 31; Smith (1930)p+4182;
Geitler in Rabenh. (1932), p. 1064, Fig. 676; Frémy (1933 a), p. 107, Lám. 29,
Fig 1 Tiden (1957), p:065, "Fig. 1175; Fott+(1971), p. 'D1Fisue0t

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Gomont (1892), p. 138, Lám. 3, Figs. 7-11; Forti in De “Toni (1907), p. 273;
Tilden (1910), p. 118, Lám. 5, Fig. 38; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1061,
Fig. 672 a; Frémy (1933 a), p. 108, Lám. 28, Fig. 3; Umezaki (1961), p. 51,
Lám. My Pier <

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Schizothrix calcicola (Agardh) Gomont, Monogr. Oscill., 16, p. 307, Lám. 8,
Figs. 1-3, 1892,

Geitler in Pascher (1925), p. 418, Fig. 537; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1083,

Fig. 692; Halperin (1967), p. 301, Lám. 3, Figs. 5-8; Acleto (1970), p. 6, Lám. 1,

Figs. 5-7; Halperin (1970), p. 67.

AA ==

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Gomont (1892), p. 110, Lám. 2, Fig. 9; Forti in De Toni (1907), p. 503;
Tilden .(1910).p: 132 Lámo 5, -Fig:! 54; Seckt:"(1924),-p.- 186;* Gettler»ín
Pascher (1925), p. 391, Fig. 497; Geitler in Rabenh. (1932), p. 112, Fig. 730;
Smith (1933), p. 82, Fig.41; Frémy (1933 a), p. 82, Lám. 22, Fig. 2; Martínez
Bustos (1934), p. 31; Smith (1950), p. 578, Fig. 494; Acleto (1966), p. 21,
lá 13, (Fig: 7.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-11);
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(Schwabe, loc. cit.).

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Sirocoleus kurziúi (Zeller) Gomont, Monogr. Oscill., 16, p. 349, Lám. 14,
Figs. 3-4, 1892.

Forti in De Toni (1907), p. 370; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1131, Fig. 738;

Frémy (1933 a), p. 71, Lám. 18, Fig. 4; Halperin (1967), p. 303, Lám. 3,

Figs. 9-10; Ardré (1969), p. 164; Halperin (1970), p. 68.

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p. 9, Forti in De Toni (1907), p. 371; Tilden (1910), p. 155, Lám. 6, Fig. 28;
Geitler in Pascher (1925), p. 436; Newton (1931), p. 27, Fig: 19” Géitler in
Rabenh. (1932), p. 113, Fig. 739; Frémy (1933 a), p. 67, Lám. 17, Fig. ES
Frémy (1933 b), p. 16; Bourrelly et Manguin (1952), p. 156, Lám. 18, Figs. 105-
106; Feldmann (1958), p. 28; Sampaio (1962), p. 19, Lám. 2, Fig. 1; Sampaio
(1965), p. Y Lám. 1; Figs. 4-7.

Citas para Chile.— Prov. Santiago, Santiago (Licuime, 1963, p. 51, Lám. B-22);
Prov. Llanquihue, Seno de Reloncaví, Canal Tenglo (Levring, 1960, p. 28);
Prov, Coquimbo, Bahía Herradura de Guayacán (Levring, loc. cit.).

US

Microcoleus tenerrimus Gomont, Monogr. Oscill., 16, p. 355, Lám. 14,
Figs. 9-11, 1892.

Fort :in'¡De Toni (1907), p. 3735 Tilden (1910),' p. “155, Tám. “Di NEL2Ó
Setchell et Gardner (1919), p. 87; Sampaio (1926), p. 20, Lám. 2, Fig. 2;
Newton (1931), p. 27; Geitler in Rabenh. (1932), p. 1135, Fig. 740; Frémy
(1933 a), p. 68, Lám. 17, Fig. 8; Frémy (1938), p. 15; Chapman (1956), p. 360,
Fig. 6 NO 4; Feldmann (1958), p. 28; Umezaki (1961), p. 35, Lám. 5, Fig. 1;
Halperin (1967), p. 308, Lám. 5, Figs. 1-2; Ardré (1969), p. 163; Halperin
(IO) Pp LDR

Cita para Chile.— Prov. Concepción, Bahía Concepción (González y Parra,
1978,.p.1 33,Figs. 11578).

Microcoleus vaginatus (Vauch.) Gomont, J. Bot. (Morot), 4, p. 353, 1890.
Gomont (1892), p. 355, Lám. 14, Fig. 12; Kirchner in Engler und Prantl (1900),
p. 65, Fig. 320; Forti in De Toni (1907), p. 374; Tilden (1910), p. 156, Lám. 6,
Fig. 29; Seckt (1924), p. 82; Borge (1925), p. 4; Geitler im Pascher (1925),
p. 435, Fig. 558; Taylor (1928), p. 90; Prescott (1931), p. 32; Geitler in Rabenh.
(1932), p. 1186, Fig: 741; Smith (1933), p.:83, Fig. 42; Smith (1950
Fig. 495; Prescott (1951), .p.,506, Lám. 131, Fig. 2; Sampaio, (1959),p-410;
Sampaio (1965), p. 9.

Cita para Chile.— Prov. Llanquihue (Schwabe, 1935, p. 6), según Drouet, 1968).

Microcoleus friesii Thuret, Ann. Sci. Nat. Bot., 6(1), p. 379, 1875.
Como Schizothrix friesii (Ag.) Gom., Monogr. Oscill., 16, p. 316, Lám. 9, Figs. 1
y. 2,1892.
Forti in De Toni (1907), p. 347; Geitler in Rabenh. (1932), p.1076, Figs. 685-
686; Prescott (1951), p. 507, Lám. 114, Fig. 5; Schwabe (1962), p. 539, Lám. 128
(20), Figs. 1-2.
Cita para Chile.— Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Isla Hoste (Hariot, 1889,
Pi 12):

Por último 2 taxa fueron citados por Forest et Weston (1966)y deter-
minados según Drouet (1956).

Anacystis montana (Lighft.) Drouet et Daily, Buttler Univ. Bot. Studies Vol.
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Cita para Chile.— Prov. Tarapacá, Desierto Atacama (Forest et Weston, 1966,
p. 163).

Coccochloris pentocystis Drouet et Daily, Lloydia 11, p. 78, 1948.

Drouet et Daily (1956), p. 31, Fig. 170-172.

Cita para Chile.— Prov. Tarapacá, Desierto Atacama (Forest et Weston, loc.
cit.).

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AGRADECIMIENTOS

Queremos expresar nuestros sinceros agradecimientos a la señorita Elsa
Ruiz M., secretaria del Departamento de Botánica del Instituto de Biología,
> l
por la mecanografía de este manuscrito.

Me y JP

INDICE DE TAXA

Anabaena
azollae, 28
catenula, 28
catenula var. affinis, 28
chilensis, 28
circinalis, 28
constricta, 28
flos-aquae, 29
solitaria f. planctonica, 29
spiroides var. minima, 29
thermophila 29
torulosa, 30
variabilis, 30
Aphanocapsa
delicatissima, 10
elachista, 10
elachista var. planctonica, 10
grevillez, 10
muscicola, 11
Aphanothece
nidulans, 11
saxicola, 11
Calothrix
aeruginea, 20
crustacea, 20
epiphitica, 21
fusca, 21
scopulorum, 21
thermalis, 21
Chamaesiphon
confervicola, 18
incrustans, 19
Chlorogloea
microcystoides, 16
Chroococcus
caldariorum, 12
coharens, 12
consacialus, 12
minor, 12
minutus, 12
turgidus, 13
Chroococcopsis
gigantea, 16
Cylindrospermum

==

catenatum, 24

malus, 24

musticola, 24

stagnale var. angustum, 24

stagnale f. fortinalis, 25

stagnale f. limariense, 25

stagnale f. naviculoides, 25
Coelosphaerium

goetzet, 14

naegelianum, 14

kuetzingianum, 14
Dermocarpa

prasina, 18

sphaerica, 18

sphaeroidea, 18
Entophysalis

granulosa, 16
Gomphosphaeria

aporina, 13

lacustris, 14
Gloeocapsa

crepidinum, 11

sanguinea, 12

Hapalosiphon
fontinalis, 19
Hydrocoryne
spongiosa, 24
Hyella
caespitosa, 17
Leptochaete
crustacea, 20
Kyrtuthrix
maculans, 19
Lyngbya

aestuarit, 42
confervoides, 43
epiphytica, 43
holsatica, 43
lagerheimit, 43
lutea, 44
martensiana, 44
semiplena, 44
Mastigocladus
laminosus, 20

Merismopedia
glauca, 15
punctata, 15
tenuissima, 15

Microcoleus
chtonoplastes, 45
tenerrimus, 46
vaginatus, 46
friesit, 46

Microcystis
aeruginosa, 9
botrys, 9
enteromorpha, 9
flos-aquae, 9
litoralis, 9
marginata, 10

Nodularia
spumigena, 27

spumigena var. litorea, 27
spumigena var, genuina, 27

Nematoradaisia
laminariae, 17
Nostoc
kihlmani, 25
linckia, 25

linckia var. crispulum,

microscopicum, 26
minutum, 26

muscorum f. crassa, 26
muscorum f. angusta,

pruniforme, 26
punctiforme, 26
sphaericum, 26
verrucosum, 27
Oscillatoria
agardhit, 32
amphibia, 33

animalis f. chilensis, 33

borneti, 33

borneti f. tenuis, 33

brevis, 33
curviceps, 34
chalybea, 34
geitlera, 34
irrigua, 34
jantiphora, 34
laetevirens, 34
limnetica, 35
limosa, 35

¡611

ad

limosa f. constricta, 35

margaritifera, 35
nigro-viridis, 35
okenii, 36
ornata, 36
percursa, 36
planctonica, 36
princeps, 36
prolifica, 37
sancta, 37
simplissima, 37
splendida, 37
subtilissima, 38
tenuis, 38

tenuis var. natans, 38
tenuis var. tergestina 38

terebriformis, 39
thiebauti, 39
Phormidium
autumnale, 39
biforme, 39
corium, 39
ectocarpit, 40
fragile, 40
inundatum, 40
laminosum, 40
molle, 40
papyraceum, 41
purpurascens, 41
retzit, 41
subfuscum, 41

submembranaceum, 41

subuliforme, 42
tenue, 42
tinctorium, 42
uncinatum, 42
Plectonema
battersit, 22
Pleurocapsa
fuliginosa, 17
Pseudanabaena
chilensis, 32
Rivularia
atra, 21
beccariana, 22
plicata, 22
Schizothrix
calcicola, 44
Scytonema

caldarium, 23
hoffmanni, 23
Sirocoleus
kurzit, 45
Spirulina
abbreviata, 30
albida, 30
breviarticulata, 30
labyrinthiformis, 31
maior, 31
meneghiniana, 31
princeps, 31
subsalsa, 31
tenerrima, 32
tenuissima, 32

q. pa

Stigonema
polyceras, 19
Symploca
muscorum, 45
Tolypothrix
distorta var fusca, 22
distorta var. penicillata, 22
distorta var. symplocoides, 23
fusca, 23
lanata, 23
limbata, 23
tenuis, 23
Xenococcus
pyriformis, 17

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA

DE LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION EL
30 DE ABRIL DE 1976

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-
ciones origimales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una
Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.
Cada número se limitará a un solo trabajo.

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